Pengaruh perendaman benih Mucuna ....
DOI : 10.32663/ja.v%vi%i.977
PENGARUH PERENDAMAN BENIH MUCUNA ( Mucuna bracteata ) DALAM BEBERAPA KONSENTRASI H 2 SO 4 TERHADAP PEMATAHAN DORMANSI
( The Effect Of Soaking Mucuna bracteata Seeds In Some Concentration Of H 2 SO 4 For Break Dormancy )
Hasri Gusman 1 , Nalwida Rozen 2 , Siska Efendi 3*
1) Alumni Program Studi Agroekoteknologi, Fakultas Pertanian, Kampus III Universitas Andalas Dharmasraya. Jl. Lintas Sumatera Km 4 Pulau Punjung,
Dharmasraya (27612), Indonesia
2) Program Studi Budidaya Pertanian, Fakultas Pertanian, Universitas Andalas, Limau Manis, Padang (25163), Indonesia
3) Program Studi Agroekoteknologi, Fakultas Pertanian, Kampus III Universitas Andalas Dharmasraya. Jl. Lintas Sumatera Km 4 Pulau Punjung,
Dharmasraya (27612), Indonesia
* Corresponding Author, Email: siskaefendi@agr.unand.ac.id

## ABSTRACT
Mucuna bracteata is a Legume Cover Crop (LCC) which has many advantages compared to other LCC. The generative propagation of M. bracteata is very difficult because of the seed coat  is  hard  and  thick,  so  that  it  has  a  long  dormancy  period  and  low  germination. Germination without seed treatment, the germination ability only 12% to 18.33%. The efforts are  made  to  break  the  seed  dormancy  by  soaking  the  seeds  in  the  sulfuric  acid  (H 2 SO 4 )  to remove  the  lignin  layer  in  the  seed  coat.  The  present  study  objective  was  to  determine  the appropriate  concentration  of  H 2 SO 4 for  breaking  dormancy  of M.  bracteata seeds.  This research  was  conducted  at  the  Laboratory  of  the  3 rd Campus  Andalas  University, Dharmasraya, in April to June 2019 used a Completely Randomized Design (CRD) consisted of 3 treatments with 4 replications. The seed treatments were some concentrations of H 2 SO 4 namely  3%,  4%,  and  5%.  The  observed  variables  were  T 50 break  dormancy  period, germination  ability,  abnormal  germination,  dead  seed,  first  count  test,  index  value,  and maximum  growth  potential.  The  observation  data  were  analyzed  by  an  F  test  at  5%  level, followed by the Duncan’s New Multiple Range Test (DNMRT) at a level of 5%. The results showed that soaking of M. bracteata seeds in H 2 SO 4 with a concentration of 3% was the best treatment, a T 50 value of 8.75 days after planting with a germination capacity of 78.50%.
Keywords : land, LCC, scarification, seed coat, weeds.

## PENDAHULUAN
Perkebunan  besar  seperti  kelapa  sawit dan  karet  di  Kabupaten  Dharmasraya  pada umumnya memiliki permasalahan yang sama yaitu pada proses pembukaan lahan. Pembukaan  lahan  baru  maupun  peremajaan tanaman  yang  sudah  tidak  produktif  lagi akan  menimbulkan  permasalahan  baru  yang berakibat fatal apabila tidak ditangani secara serius,  salah  satu  contohnya  adalah  dalam menangani  perubahan  kondisi  lahan.  Lahan
yang  sebelumnya  memiliki  vegetasi  yang banyak  dan  beragam  akan  mengalami perubahan ketika pembukaan lahan dilaksanakan,  lahan  yang  terbuka  tanpa penutup  diatasnya  akan  rentan  mengalami erosi  tanah,  tanah  gersang  dan  pertumbuhan gulma.  Penanaman  tanaman leguminous cover  crops (LCC)  dan  pemeliharaannya menjadi  hal  yang  sangat  penting  dan  harus dilakukan dengan baik, hal ini akan berperan cukup besar pada keberhasilan pembangunan
Pengaruh perendaman benih Mucuna ....
DOI : 10.32663/ja.v%vi%i.977
kebun kelapa sawit secara umum. Penanaman  LCC  yang  merupakan  tanaman penutup tanah akan dapat menekan pertumbuhan  gulma  yang  merugikan  bagi tanaman  kelapa  sawit  seperti Imperata cylindrica , Mikania  micrantha ,  pakisan,  dan gulma  lainnya,  sehingga  dapat  menghemat biaya  perawatan  tanaman  kelapa  sawit khususnya  pada  masa  tiga  tahun  pertama tanaman  kelapa  sawit  belum  menghasilkan (TBM).
Selain  itu  pertumbuhan  tanaman  LCC yang  rapat  dapat  mengurangi  resiko  erosi tanah,  memperbaiki  sifat  fisik  dan  kimia tanah dengan menyumbangkan bahan organik, mempercepat dekomposisi (pelapukan)  batang-batang  kayu  hasil land clearing yang mendukung terciptanya lingkungan  yang  lembab  yang  sesuai  untuk aktivitas  biologi,  dan  mengurangi  serangan hama Oryctes rhinoceros dengan tertutupnya batang-batang  kayu  yang  melapuk  yang merupakan  tempat  berkembang  biak  hama tersebut. Sejalan dengan pendapat Sastrosayono  (2005),  LCC  juga  memiliki manfaat  sebagai  berikut:  menghindarkan tanah  dari  bahaya  erosi  karena  tetesan  air hujan  tidak  langsung  menerpa  tanah, guguran  daun  dan  bintil  akarnya  dapat menambah  kandungan  nitrogen  pada  tanah, guguran  daunnya  berfungsi  sebagai  bahan organik sehingga dapat membantu memperbaiki  struktur  tanah.  Oleh  karena manfaat  tanaman  LCC  yang  demikian  besar itu,  penanaman  dan  pemeliharaan  LCC menjadi suatu kewajiban yang harus diperhatikan dengan serius pertumbuhan dan perkembangannya untuk memastikan keberhasilan perkebunan kelapa sawit.
Penanaman LCC di perkebunan kelapa  sawit  dapat  menggunakan Pueraria javanica,  Calopogonium  mucunoides dan Calopogonium  caeruleum. Namun  saat  ini sudah  beralih  ke  LCC  jenis Mucuna bracteata karena  jenis  ini  memiliki  banyak kelebihan dibandingkan dengan jenis lainnya diantaranya  produksi  biomassa  tinggi,  tahan terhadap  kekeringan  dan  naungan,  tidak disukai  ternak,  cepat  menutup  tanah  dan
dapat  berkompetisi  dengan  gulma  (Othman et al ., 2012).
M. bracteata adalah salah satu tanaman LCC yang merambat dan ditemukan pertama kali  di  areal  hutan  Tri  Pura,  India  Utara dan sudah meluas sebagai tanaman penutup tanah di  perkebunan  karet  di  Kerala  India  Selatan. M.  bracteta juga  banyak  digunakan  pada perkebunan  di  Indonesia  seperti  kebun  karet dan kelapa sawit. Siagian (2003) menyatakan bahwa perkebunan kelapa sawit dan perkebunan karet selalu menggunakan tanaman M. bracteata pada areal peremajaan.
Perbanyakan M.  bracteata secara generatif  sangat  sulit  dilakukan  dikarenakan kulit  biji  yang  keras  sehingga  untuk berkecambah  perlu  dilakukan  skarifikasi pada bijinya. Jika dilakukan pengecambahan tanpa  memberikan  perlakuan  pematahan dormansi  persentase  kecambahnya  hanya 12%  hingga  18,33%  (Siregar,  2010).  Faktor yang mempengaruhi rendahnya daya kecambah M.  bracteata adalah  mutunya kurang baik, penyimpanan  yang tidak sesuai dengan  standar,  adanya  infeksi  penyakit  dan hama  serta  yang  paling  utama  adalah  kulit biji  yang  keras,  kulit  biji  yang  keras  dan kedap menjadi penghalang mekanis terhadap masuknya air dan gas (Karyudi dan  Siagian, 2001)
Pematahan  dormansi  dapat  dilakukan secara mekanis (pengguntingan kulit). Perlakuan  menghilangkan  kulit  benih  (testa) dan membuang sebagian testa bertujuan agar embrio dapat segera tumbuh tanpa hambatan. Pematahan  dormansi  secara  mekanis  tidak mudah  dilakukan  karena  ukuran  benih  yang kecil  serta  kulit  biji  yang  keras  dan  liat. Selain  secara  mekanis,  pematahan  dormansi juga  dapat  dilakukan  secara  kimiawi  dengan menggunakan  beberapa  bahan  kimia.  Bahan kimia yang dapat digunakan untuk pematahan dormansi antara lain  asam sulfat, potassium  nitrat serta  hormon  pertumbuhan seperti  giberelin.  Menurut  Harjadi  (1979), perendaman  benih  dalam  asam  sulfat  pekat berpengaruh  pada  pelunakan  kulit  benih bagian  luar  (testa),  sedangkan  menurut
Pengaruh perendaman benih Mucuna ....
DOI : 10.32663/ja.v%vi%i.977
Bewley  dan  Black  (1978)  asam  sulfat  dapat mempengaruhi perkecambahan melalui peningkatan  temperatur.  Apabila  temperatur pada  saat  pengenceran  asam  sulfat  tinggi, maka akan meningkatkan kecepatan imbibisi pada  benih.  Penelitian  ini  bertujuan  untuk mengetahui konsentrasi  H 2 SO 4 yang  tepat untuk  pematahan  dormansi  benih M. bracteata.

## BAHAN DAN METODE
Penelitian  ini  berbentuk  eksperimen yang disusun menggunakan Rancangan Acak Lengkap  (RAL)  dengan  3  perlakuan  yaitu 3%, 4%, dan 5% dengan 4 ulangan, sehingga diperoleh 12 satuan percobaan. Setiap satuan percobaan  terdiri  atas  50  benih,  sehingga total  benih  yang  digunakan  sebanyak  600 benih. Semua data yang diperoleh dari setiap pengamatan  dianalisis  dengan  sidik  ragam dan  apabila  nilai  F  hitung  perlakuan  >  F tabel  5%  dilanjutkan  dengan Duncan’s  New Multiple  Range  Test (DNMRT)  pada  taraf nyata 5%.
Benih  yang  digunakan  pada  penelitian ini  adalah  yang  memiliki  ukuran  seragam dan  tidak  memiliki cacat  fisik  seperti  pecah, kisut  dan  berjamur  yang  berasal  dari  PPKS Medan.  Benih  diseleksi  dari  benih  pecah, rusak  fisik  (kisut  atau  keriput)  dan  tidak berjamur.  Jumlah  benih  yang  digunakan pada masing-masing satuan percobaan adalah 50 benih, sehingga jumlah keseluruhan  benih  yang  digunakan  adalah 600  benih.  Benih  direndam  dalam  ember yang  berisi  air  dan  kemudian  dibersihkan dari kotoran yang menempel.
Pembuatan larutan H 2 SO 4 dan perendaman benih
Siapkan  3  buah  gelas  piala  yang berukuran  1000  ml  dan  12  buah  yang berukuran  200  ml,  selanjutnya  masukan cairan  H 2 SO 4 kedalam  masing-masing  gelas piala yang berukuran 1000 ml sesuai dengan volume  takaran  pada  Lampiran  4  dan dicukupkan dengan aquades sehingga mebentuk  larutan  yang  homogen  dengan volume  800  ml.  Larutan  H 2 SO 4 dengan
berbagai  konsentrasi  dituangkan  kedalam masing-masing  gelas  piala  yang  berukuran 200 ml sesuai dengan jumlah ulangan. Untuk menghindari  kecelakaan  kerja  gunakan sarung  tangan  dan  masker  serta  pekerjaan dilakukan  pada  lemari  asam.  Selanjutnya benih  yang  telah  diseleksi  dan  bersih  dari kotoran  direndam  dalam  larutan  H 2 SO 4 selama 10 menit dengan berbagai konsentrasi sesuai dengan perlakuan.

## Pembuatan larutan fungisida dan perendaman benih
Siapkan  3  gelas  piala  yang  berukuran 1000  ml  yang  masing-masingnya  diisi  800 ml  aquadest.  Campurkan  fungisida  ( Metil Tiofanat )  kedalam  aquadest  sebanyak  54  g pada  masing-masing  gelas  piala  hingga membentuk larutan yang homogen, selanjutnya larutan dituangkan kedalam gelas piala berukuran 200 ml sesuai dengan jumlah perlakuan  dan  ulangan.  Benih  yang  telah selesai  direndam  dalam  larutan  H 2 SO 4, dilanjutkan  dengan  perendaman  dengan fungisida  selama  5  menit  agar  benih  tidak berjamur saat dikecambahkan.

## Persiapan Media Perkecambahan
Siapkan  2  lembar  kertas  stensil  yang telah  dibasahi  dan  letakan  terhampar  di  atas meja  kerja  yang  datar,  benih  disusun  secara teratur sebanyak 5 baris yang masing-masing baris  terdapat  10  butir  benih M.  bracteata , sehingga  masing-masing  kertas  terdapat  50 butir  benih M.  bracteata .  Tutup  benih  yang telah  disusun  tadi  dengan  satu lembar  kertas stensil  yang  telah  dilembabkan  lalu  gulung kertas  mengikuti  arah  panjang  kertas, kegiatan ini diulangi sesuai jumlah perlakuan dan  ulangan.  Letakan  kertas  stensil  yang telah digulung pada pad (wadah) pengecambah yang terdapat pada germinator. Untuk menghindari kesalahan pada pengamatan  dan  penghitungan  cantumkan label  pada  setiap  perlakuan  dan  ulangan, kemudian benih yang telah dihitung langsung dipisahkan.

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Waktu Patah Dormansi (T 50 )
Pengaruh perendaman benih Mucuna ....
DOI : 10.32663/ja.v%vi%i.977
Perendaman benih M. bracteata dalam beberapa konsentrasi H 2 SO 4 memperlihatkan pengaruh  berbeda  nyata  terhadap  waktu patah  dormansi  T 50 benih M.  bracteata . Tabel  1  menunjukkan  pada  pemberian perlakuan  perendaman  benih  dalam  H 2 SO 4 dengan konsentrasi 5% memberikan pengaruh  berbeda  nyata  dengan  perlakuan 4%  dan  3%  sedangkan  pada  perlakuan perendaman  benih  dalam  H 2 SO 4 dengan konsentrasi 4% memberikan pengaruh
berbeda  tidak  nyata  dengan  konsentrasi  3% terhadap waktu patah dormansi T 50 benih M. bracteata .  Perlakuan  perendaman  benih dalam  H 2 SO 4 dengan  konsentrasi  4% merupakan waktu tercepat untuk waktu patah dormansi T 50 yaitu 8,50 HST sedangkan pada perlakuan  perendaman  benih  dalam  H 2 SO 4 dengan  konsentrasi  5%  merupakan  waktu patah  dormansi  T 50 paling  lama  yaitu  10,25 HST.
Tabel  1.  Waktu  patah  dormansi  benih M.  bracteata ≥  50  %  dengan  perlakuan  perendaman benih dalam beberapa konsentrasi H 2 SO 4 selama 10 menit.
Konsentrasi H 2 SO 4 (%) Waktu patah dormansi (hari) 3 8,75 b 4 8,50 b 5 10,25 a
Angka – angka pada kolom yang sama diikuti oleh huruf kecil yang berbeda adalah berbeda nyata menurut uji DNMRT pada taraf 5%
Adanya fluktuasi waktu patah dormansi T 50 yang diperoleh disebabkan oleh pengaruh  perlakuan  konsentrasi  H 2 SO 4 yang sangat  berperan  dalam  melunakan  kulit  biji dan  membuang  lapisan  lignin  pada  kulit biji sehingga  air  dan  gas  dapat  menembus  kulit biji  yang  keras  sehingga  benih  dapat berkecambah  dengan  optimal.  Sadjad et  al. (1975)  berpendapat  bahwa  perlakuan  kimia seperti  H 2 SO 4 pada  prinsipnya  adalah membuang lapisan lignin pada kulit biji yang keras  dan  tebal  sehingga  biji  kehilangan lapisan  yang  impermeabel  terhadap  gas  dan air  sehingga  metabolisme  dapat  berjalan dengan baik.
Perkecambahan  benih  diawali  dengan penyerapan  air  dari  lingkungan  hingga mencapai  kadar  air  yang  memungkinkan benih untuk berkecambah. Benih M. bracteata mempunyai  kulit  benih  (testa) yang keras, hal ini menyebabkan penyerapan air terhambat. Menurut Sari (2012) persentase daya kecambah M bracteata tanpa perlakuan  pematahan  dormansi  sebesar 0,91%.  Perlakuan  pematahan  dormansi dengan  cara  perendaman  dalam  larutan H 2 SO 4 bertujuan untuk meningkatkan persentase  daya  kecambah M.  bracteata .
Harjadi (1994) mengemukakan bahwa larutan  asam  kuat  seperti  asam  sulfat,  asam nitrat  dengan  konsentrasi  pekat  membuat kulit biji menjadi lebih lunak sehingga dapat dilalui oleh air dengan mudah. Kamil (1979) juga menyatakan bahwa penyerapan air oleh embrio dan endosperma menyebabkan pembesaran  sel–sel  pada  embrio  dan endosperma,  sehingga  mendesak  kulit  biji hingga  pecah  dan  lunak,  yang  memberikan ruang untuk keluarnya tunas.
Perkecambahan  merupakan salah  satu proses  pertumbuhan  dan  perkembangan embrio (lembaga tumbuhan). Hasil perkecambahan ini adalah munculnya tumbuhan  kecil  dari  dalam  biji.  Proses perubahan  embrio  saat  perkecambahan adalah  plumula  tumbuh  dan  berkembang menjadi  batang,  dan  radikula  tumbuh  dan berkembang menjadi akar. Proses perkecambahan di  pengaruhi  oleh  cahaya, suhu,  dan  oksigen.  Perkecambahan  juga melibatkan proses biofisik dan proses biokimia. Proses biofisik terjadi yaitu pada awal  perkecambahan  dimulai dengan berakhirnya  masa  dormansi  pada  biji. Berakhirnya  masa  tersebut  ditandai  dengan proses imbibisi, yaitu masuknya air ke dalam
Pengaruh perendaman benih Mucuna ....
DOI : 10.32663/ja.v%vi%i.977
biji  yang  mengakibatkan  biji  mengembang dan kulit biji akan pecah. Secara fisiologis, proses perkecambahan berlangsung dalam beberapa tahapan penting, meliputi:  Absorbsi air, metabolisme pemecahan materi cadangan makanan, transpor  materi  hasil  pemecahan  dari endosperm  ke  embrio  yang  aktif  tumbuh, proses  proses  pembentukan  kembali  materi- materi
baru, respirasi,
dan pertumbuhan sedangkan proses biokimia terjadi ketika  air  masuk  pada biji kemuadian air  tersebut  mengaktifkan  embrio  untuk melepaskan hormon Giberelin (GA). Hormon ini mendorong aleuron (lapisan tipis bagian  luar  endosperma)  untuk  mensintesis dan  mengeluarkan  enzim.  Enzim  bekerja
dengan  menghidrolisis  cadangan  makanan yang terdapat pada kotiledon dan endosperma. Kemudian enzim yang ada pada biji  tersebut  misalnya  enzim  amilase  akan mengubah  amilum  yang  terdapat  pada kotiledon  menjadi  glukosa,  dan  glukosa  ini diperlukan untuk proses pembentukan energi bersama oksigen (Hasnunidah 2011).

## Uji Daya Berkecambah Benih

## 1. Daya Kecambah
Perlakuan  perendaman  benih  dalam beberapa konsentrasi H 2 SO 4 memperlihatkan pengaruh  yang  berbeda  nyata  terhadap  daya berkecambah benih M. bracteata .
Tabel 2a. Daya berkecambah benih M. bracteata dengan perlakuan perendaman benih dalam beberapa konsentrasi H 2 SO 4 selama 10 menit.
Konsentrasi H 2 SO 4 (%) Daya Kecambah (%) 3 78,50 a 4 62,00 b 5 43,00 c
Angka – angka pada kolom yang sama diikuti oleh huruf kecil yang berbeda adalah berbeda nyata menurut uji DNMRT pada taraf 5%.
Tabel 2a menunjukkan bahwa perlakuan perendaman benih dalam beberapa konsentrasi  H 2 SO 4 memberikan  pengaruh berbeda  nyata  terhadap  daya  berkecambah benih M.  bracteata .  Perlakuan  perendaman benih  dalam  H 2 SO 4 dengan  konsentrasi  3% berbeda  nyata  dengan  perendaman  benih dalam  H 2 SO 4 dengan  konsentrasi  4%  dan 5%. Dari tabel diatas dapat dilihat perlakuan perendaman  benih  dalam  H 2 SO 4 dengan konsentrasi  3%  merupakan  konsentrasi terbaik  dengan  rata-rata  daya  berkecambah benih  78,50%  sedangkan  daya  berkecambah terendah terdapat pada perlakuan 5% dengan rata-rata  daya  berkecambah  43%.  Namun dengan  daya  berkecambah  sebesar  78,50% benih  tersebu  belum  dapat  dikatakan memiliki  viabilitas  yang  baik.  Menurut Kamil  (1979),  benih  dikatakan  memiliki viabilitas  baik  jika  mempunyai  nilai  daya berkecambah  lebih  besar  80%.  Daya berkecambah  dapat  menggambarkan  status kemampuan  perkecambahan  benih  yang dilihat  dari  kemampuan  benih  dalam
menghasilkan  kecambah  normal  (Sadjad, 1980). Sedangkan menurut Copeland (1976), benih  yang  memiliki  daya  kecambah  (seed germination) yang tinggi dapat mengindikasikan  bahwa  benih  tersebut memiliki  viabilitas  yang  baik.  Berdasarkan hasil  penelitian  yang  diperoleh  perlakuan perendaman  benih  dalam  H 2 SO 4 belum menunjukan  viabilitas  yang  baik,  tetapi perlakuan  perendaman  benih  dalam  H 2 SO 4 mampu  meningkatkan  daya  berkecambah normal  benih M.  bracteata .  Sari  (2012) menyatakan bahwa persentase daya kecambah  M.  bracteata  tanpa  perlakuan pematahan dormansi sebesar 0,91%.
Sedangkan  dari  hasil  pra  penelitian perendaman  benih  dalam  H 2 SO 4 dengan konsentrasi  2%  selama  10  menit,  persentase daya  kecambah M.  bracteata sebesar 63,50%,  dan  pada  perlakuan  perendaman benih  dalam  H 2 SO 4 dengan  konsentrasi  3% selama  10  menit  persentase  daya  kecambah mengalami peningkatan dengan daya berkecambah  benih  yaitu  78,50%  sementara
Pengaruh perendaman benih Mucuna ....
DOI : 10.32663/ja.v%vi%i.977
pada  konsentrasi  H 2 SO 4 4%  dan  5% persentase  daya  kecambah  benih  mengalami penurunan  yaitu  62%  dan  43%.  Dari  data tersebut  dapat  dilihat  bahwa  terdapat fluktuasi  naik  turun  antara  perlakuan  yang diberikan,  puncak  tertinggi  daya  kecambah benih  adalah  pada  perlakuan  perendaman dengan  H 2 SO 4 dengan  konsentrasi  3% selama 10 menit.
Hal  ini  menunjukan  bahwa  perlakuan perendaman benih dalam H 2 SO 4 memberikan peran  penting  dalam  membuang  lapisan lignin  dan  melunakkan  kulit  biji  secara optimal  sehingga  air  dan  gas  dapat menembus kulit biji. Sutopo (2004) menyatakan proses perkecambahan benih itu dapat  terjadi  jika  kulit  benih  permeabel terhadap  air  dan  tersedia  cukup  air  dengan tekanan  osmosis  tertentu  air  yang  diserap oleh biji dapat terjadi melalui proses imbibisi dan  diikuti  keluarnya  energi  kinetik  akibat adanya  pengambilan  molekul  air.  Proses imbibisi yang terjadi akan segera diikuti oleh kenaikan  aktivitas  enzim  dan  pernafasan yang  besar.  Pati,  lemak  dan  protein  yang tersimpan  dihidrolisis  menjadi  zat-zat  yang lebih  mobil,  gula,  asam-asam  lemak,  dan asam-asam  amino  yang  diangkut  ke  bagian embrio yang tumbuh aktif.
Pengujian daya berkecambah mempunyai tujuan untuk menentukan potensi  perkecambahan  maksimal  dari  suatu lot  benih,  yang  dapat  digunakan  untuk membandingkan  mutu  benih  dari  lot  yang berbeda dan untuk menduga daya berkecambah di lapangan.
Daya
berkecambah  benih  memberikan  informasi
kepada  pemakai  benih  akan  kemampuan benih tumbuh normal menjadi tanaman yang berproduksi  tinggi  dalam  keadaan  biofisik lapangan  yang  serba  optimum.  Sutopo (2002) menyatakan persentase perkecambahan  adalah  persentase  kecambah normal  yang  dapat  dihasilkan  oleh  benih murni  pada  kondisi  yang  menguntungkan dalam  jangka  waktu  yang  sudah  ditetapkan. Bewley  dan  Black  (1985)  mengatakan perkecambahan  yang  sempurna  ditandai dengan  penetrasi  struktur  embrio  berupa radikula  dari  testa  benih.  Plumula  dan radikula  yang  tumbuh  diharapkan  dapat menghasilkan  kecambah  yang  normal,  jika faktor lingkungan mendukung.
2. Kecambah Abnormal
Perlakuan  perendaman  benih  dalam beberapa  konsentrasi  H 2 SO 4 memberikan pengaruh  berbeda  nyata  terhadap  persentase kecambah abnormal benih M. bracteata . Tabel 2b menunjukkan pada perlakuan perendaman benih dalam beberapa konsentrasi  H 2 SO 4 memberikan  pengaruh berbeda nyata terhadap persentase kecambah abnormal  benih M.  bracteata .  Perlakuan perendaman  benih  dalam  H 2 SO 4 dengan konsentrasi  3%  berbeda  nyata  dengan konsentrasi  4%  dan  5%.  Perlakuan  terbaik perendaman  benih  dengan  H 2 SO 4 terhadap persentase kecambah abnormal adalah konsentrasi 3% dengan persentase kecambah abnormal paling kecil yaitu 7,00% sedangkan  pada  perlakuan  5%  adalah perlakuan dengan persentase benih abnormal paling tinggi yaitu 21,50%.
Tabel  2.b.  Kecambah  abnormal  benih M.  bracteata dengan  perlakuan  perendaman  benih dalam beberapa konsentrasi H 2 SO 4 selama 10 menit.
Konsentrasi H 2 SO 4 (%) Kecambah Abnormal (%) 3 7,00 c 4 13,00 b 5 21,50 a
Angka – angka pada kolom yang sama diikuti oleh huruf kecil yang berbeda adalah berbeda nyata menurut uji DNMRT pada taraf 5%.
Pada  Tabel  2b  dapat  kita  lihat  bahwa data  yang  diperoleh  berfluktasi  mulai  dari 7,00%  hingga  21,50%.  Variasi  data  tersebut disebabkan oleh faktor perlakuan perendaman  benih  dalam  H 2 SO 4 dengan beberapa  konsentrasi  yang  mempengaruhi
Pengaruh perendaman benih Mucuna ....
DOI : 10.32663/ja.v%vi%i.977
proses  pembuangan  lapisan  impermeabel pada  kulit  biji,  pelunakan  kulit  biji  dan aktivitas metabolisme benih secara langsung. Perbedaan  tingkat  konsentrasi  H 2 SO 4 yang digunakan  akan  memberikan  pengaruh  yang berbeda  pula  pada  tingkat  pelunakan  kulit biji, konsentrasi yang tinggi memiliki tingkat pelunakan  kulit  biji  yang  paling  tinggi sehingga mempengaruhi proses perkecambahan benih. Faustina et al. (2011) menyatakan  bahwa  konsentrasi  dan lamanya waktu  perendaman  mempengaruhi  tingkat kerusakan pada biji. Semakin tinggi konsentrasi  dan  semakin  lama  waktu perendaman  maka  kerusakan  biji  juga semakin  tinggi.  Sejalan  dengan  pernyataan Winami  (2009)  perendaman  selama  1-10 menit  terlalu cepat untuk pematahan dormansi, sedangkan perendaman selama 60 menit  atau  lebih  dapat  menyebabkan kerusakan pada benih, selain konsentrasi dan lama  waktu  perendaman,  perkecambahan juga  dipengaruhi  oleh  faktor  internal  dari benih seperti: ukuran benih, tingkat kemasakan  benih,  dan  zat  penghambat perkecambahan (Sutopo, 2002).
Menurut  Pratiwi  (2016),  kecambah abnormal  ditandai  dengan  akar  primer  yang pendek, bentuk kecambah cacat, perkembangan bagian-bagian penting seperti radikula  dan  koleoptil  lemah,  radikula  dan koleoptil membengkok atau terputar, kecambah kerdil, kecambah rusak, perkembangan  kecambah  yang  lemah,  dan kecambah lunak. Sementara kriteria kecambah  abnormal  yang  ditemukan  antara lain: kecambah lunak atau rusak pada bagian fisik benih serta bagian kecambah yang tidak sempurna  secara  struktural  (koleoptil  dan akar primer yang tidak terbentuk). Kecambah yang  radikulanya  membengkok  disebabkan oleh  struktur  radikula  bagian  anterior  yang lemah  dan  tidak  mampu  menopang  beban benih sehingga membengkok, selain itu juga
disebabkan  oleh  faktor  cahaya,  benih mendapatkan  sinar  matahari  yang  sedikit sehingga  radikula  membengkok.  Selain  itu Pontoh  (2004),  menyatakan  bahwa  media tanam  yang  terlalu  sempit  juga  dapat menyebabkan  radikula  membengkok  hingga berputar,  sedangkan  benih  yang  koleoptil dan akar primernya tidak muncul disebabkan oleh metabolisme benih yang berjalan sangat lambat, hal  tersebut disebabkan oleh aktivitas  enzimatis  benih  yang  terhambat akibat  pengaruh  konsentrasi  bahan  kimia yang  tinggi  sehingga  banyak  sisa  bahan kimia  yang  menempel  pada  kulit  biji  yang umumnya ditemui diperlakuan dengan konsentrasi  4%  dan  5%.  Widyawati  (2011) menyatakan apabila proses pematahan dormansi  dengan  cara  perendaman  bahan kimia  yang  dilakukan,  pastikan  untuk membilas  benih  dengan  air  beberapa  kali sampai  zat  kimia  asam  tersebut  benar-benar hilang  tercuci  sehingga  tidak  menghambat proses perkecamabahan di lapangan.
Kecambah  abnormal  tidak  hanya dipengaruhi oleh perlakuan, tetapi dapat pula dipengaruhi oleh faktor internal dan eksternal.  Menurut  Saleh  (2002),  faktor internal  yang  mempengaruhi  antara  lain: faktor  genetis  dan  permeabilitas  kulit  benih. Faktor genetis bersifat menetap dan diturunkan ke generasi selanjutnya sedangkan permeabilitas kulit biji disebabkan  oleh  komposisi  kimia  pada  kulit benih  tersebut.  Sementara  faktor  eksternal terdiri  dari:  kecukupan  air,  suhu,  oksigen, dan  cahaya.  Kondisi  lingkungan  eksternal yang  tidak  optimal  (sub-  optimum)  dapat menyebabkan  cekaman lingkungan  sehingga terbentuk benih abnormal.
3. Benih Mati
Perlakuan  perendaman  benih  dalam beberapa  konsentrasi  H 2 SO 4 memberikan pengaruh  berbeda  nyata  terhadap  persentase benih mati M. bracteata .
Pengaruh perendaman benih Mucuna ....
DOI : 10.32663/ja.v%vi%i.977
Tabel  2.c.  Benih  mati  benih M.  bracteata dengan  perlakuan  perendaman  benih  dalam beberapa konsentrasi H 2 SO 4 selama 10 menit .
Konsentrasi H 2 SO 4 (%) Benih Mati (%) 3 14,50 c 4 25,00 b 5 35,50 a
Angka – angka pada kolom yang sama diikuti oleh huruf kecil yang berbeda adalah berbeda nyata menurut uji DNMRT pada taraf 5%.
Tabel  2c  menunjukkan  bahwa  pada perlakuan perendaman benih dalam beberapa konsentrasi  H 2 SO 4 memberikan  pengaruh berbeda nyata terhadap persentase benih mati M.  bracteata. Perlakuan  perendaman  benih dalam  H 2 SO 4 dengan  konsentrasi  3% berbeda nyata dengan perlakuan perendaman benih  dalam  H 2 SO 4 dengan  konsentrasi  4% dan 5%. Perlakuan perendaman benih dalam H 2 SO 4 dengan konsentrasi 5% menyebabkan benih  mati  terbanyak  dengan  rata-rata persentase  benih  mati  35,50%  sedangkan jumlah  benih  mati  paling  sedikit  adalah perlakuan  dengan  konsentrasi  3%  dengan rata-rata  persentase  benih  mati  14,50%. Persentase  benih  mati  yang  tinggi  pada perlakuan  perendaman  benih  dalam  H 2 SO 4 dengan  konsentrasi  5%  disebabkan  oleh konsentrasi  bahan  kimia  yang  terlalu  tinggi, sehingga  benih  menjadi  rusak  hingga  mati, rusaknya  benih  dapat  berupa  kerusakan struktur  benih  seperti  bagian  protoplasma, maupun  kerusakan  secara  fungsional  seperti enzim yang terdenaturasi.
Winarni  (2009)  menyatakan  bahwa perendaman  selama  1-10  menit  terlalu  cepat untuk  pematahan  dormansi,  sedangkan perendaman  selama  60  menit  atau  lebih dapat  menyebabkan  kerusakan  pada  benih. Tingginya  konsentrasi  bahan  kimia  yang digunakan dapat menyebabkan enzim terdenaturasi dan mematikan aktivasi katalisnya  sehingga  benih  menjadi  lemah. Selain  itu  benih  dalam  kondisi  lemah  akan menjadi  sangat  rentan  untuk  terserang patogen  seperti  jamur  dan  bakteri,  sehingga peluang  benih  untuk  terkontaminasi  oleh patogen akan semakin tinggi.
Gejala  benih  mati  yang  ditemukan dalam  penelitian  ini  antara  lain  berupa
endosperm  yang  sudah  habis  (kopong), busuk  dan  embrio  yang  terserang  jamur. Benih  yang  kopong  diduga  disebabkan  oleh ulat  yang  menembus  kulit  benih  dan memakan  endosperm  benih,  sedangkan serangan  jamur  disebabkan  oleh  perlakuan konsentrasi  yang  tinggi,  sehingga  benih menjadi lemah sementara kondisi lingkungan yang  lembab  rentan  bagi  perkembangan sebagian  besar  jamur,  sehingga  sangat mudah untuk menyerang benih.
Jamur  menjadikan  endosperm  benih sebagai  bahan  makanannya,  endosperm mengandung  karbohidrat  dan  glukosa  yang sangat  disukai  oleh  jamur  sebagai  bahan makanan.  Endosperm  yang  telah  habis dimakan  oleh  jamur  akan  mengakibatkan embrio  pada  benih  tidak  mampu  untuk berkecambah karena tidak tersedianya energi.  Jamur  yang  menyerang  benih  juga menyebabkan  embrio  benih  menjadi  busuk dan berwarna hitam. Jamur yang menyerang benih  antara  lain  Aspergillus  flavus  yang ditandai  dengan  hifa  berwarna  putih  dan spora  berwarna  hijau  kekuningan,  dan Aspergilus  versicolor  yang  ditandai  dengan hifa berwarna putih dan spora berwarna hijau tua.  Munculnya  jamur  tersebut  disebabkan oleh  kondisi  media  perkecambahan  yang lembab  sehingga  jamur  mudah  menyerang benih M.  bracteata .  Jika  jamur  yang menyerang  benih  tidak  dibersihkan,  maka endosperm  akan  diserang  jamur  yang mengakibatkan  embrio  benih  busuk  dan akhirnya  mati. Widyawati et  al .  (2009), apokol benih aren yang terinfeksi jamur tidak mampu untuk tumbuh menjadi bibit.
Adapun benih yang tidak berkecambah lebih  dikategorikan  kepada  benih  mati,  hal ini  karena  benih  tidak  berkecambah  yang
Pengaruh perendaman benih Mucuna ....
DOI : 10.32663/ja.v%vi%i.977
ditemukan  memiliki  gejala  berupa  serangan jamur  dan  endospermnya  yang  habis (kopong). Dengan demikian, dalam pengamatan  ini  tidak  dilakukannya  uji tetrazolium.

## Uji Hitung Pertama
Perlakuan  perendaman  benih  dalam H 2 SO 4 memberikan  pengaruh  berbeda  tidak nyata  terhadap  persentase  Uji  Hitung Pertama (UHP) benih M. bracteata . Tabel 3 menunjukkan bahwa perendaman benih dalam H 2 SO 4 memberikan pengaruh  berbeda  tidak  nyata  terhadap persentase UHP benih M. bracteata. Perlakuan  perendaman  benih  dalam  H 2 SO 4 dengan  beberapa  konsentrasi  tidak  mampu mempengaruhi  UHP  benih,  namun  diantara beberapa konsentrasi H 2 SO 4 yang digunakan, perlakuan konsentrasi 3% merupakan persentase  UHP  tertinggi.  Faktor  yang menyebabkan H 2 SO 4 tidak dapat
meningkatkan UHP benih dikarenakan faktor yang  mempengaruhi  perkecambahan  benih tidak  hanya  dari  faktor  eksternal  namun faktor  internal  juga  sangat  berperan  penting dalam  perkecambahan  benih.  Hartman et  al. (1978)  menyatakan  perkecambahan  benih sangat  ditentukan  oleh  faktor  internal  dan eksternal.  Faktor  internal  adalah  semua faktor  yang  mempengaruhi  perkecambahan di  dalam  benih,  misalnya  sifat  genetik, permeabilitas  membran  sel  dan  komposisi bahan  kimia  yang  terlarut  dalam  sitoplasma sel  benih.  Meskipun  perlakuan  perendaman benih  dalam  H 2 SO 4 dengan  beberapa konsentrasi tidak dapat mempengaruhi kecepatan  berkecambah  benih M.  bracteata , namun  perlakuan  yang  diberikan  mampu meningkatkan  daya  berkecambah  benih, daya  berkecambah  benih  dapat  dilihat  pada Tabel 2a.
Tabel 3. Uji Hitung Pertama benih M. bracteata dengan perlakuan perendaman benih dalam H 2 SO 4 dengan bebagai konsentrasi
Konsentrasi H 2 SO 4 (%) Uji Hitung Pertama (%) 3 8,00 4 7,00 5 5,00
Angka –  angka pada kolom  yang tidak diikuti oleh  huruf kecil  adalah berbeda tidak  nyata  menurut  uji  F pada taraf 5%.
Uji  hitung  pertama  merupakan  suatu metode  uji  yang  pengamatannya  dilakukan satu  kali  saja  lebih  dekat  pada  uji  kekuatan tumbuh.  Karena  terdapat  unsur  kecepatan tumbuh.  Pengujian  ini  akan  mmberikan gambaran  vigor  dari  benih  yang  diuji.  Byrd (1983) mengatakan bahwa uji hitung pertama merupakan  suatu  pengujian  yang  dapat dilaksanakan  bersama  dengan  uji  daya berkecambah.  Benih  yang  berkecambah lebih  lambat  dianggap  memiliki  vigor  yang rendah.  Menurut  Sudikno  (1991)  selain  dari kecepatan  berkecambah  untuk  pengujian daya tumbuh juga dapat dideteksi dengan uji hitung  pertama  yaitu  energi  perkecambahan pada waktu tertentu, 3-5 hari tergantung pada jenis benihnya.
Sutopo  (1984)  menyatakan  kekuatan tumbuh  benih  sama  dengan  kemampuan benih  untuk  berkecambah  normal  dalam kondisi lingkungan yang kurang menguntungkan,  sehingga  diharapkan  benih tersebut  dapat  menjadi  tanaman  normal meskipun  kondisi  lingkungan  sub  optimum. Penilaian kekuatan tumbuh benih digolongkan  atas  kecambah  kuat,  kurang kuat, abnormal, dan mati. Untuk memudahkan  penilaian  kelompok  kecambah yang  dinilai,  terlebih  dahulu  digolongkan atas  kecambah  kuat  dan  kurang  kuat, kecambah  yang  abnormal  digolongkan sebagai  kecambah  mati.  Kekuatan  tumbuh benih  dengan  kecepatan  berkecambah  benih memiliki  korelasi  yang  nyata,  kecepatan berkecambah dapat dijadikan sebagai
Pengaruh perendaman benih Mucuna ....
DOI : 10.32663/ja.v%vi%i.977
parameter  vigor  karena  diketahui  ada korelasi  antara  kecepatan  berkecambah dengan tinggi rendahnya produksi tanaman.
Rendahnya  vigor  pada  benih  dapat disebabkan  oleh  beberapa  hal  antara  lain faktor genetis, fisiologis, morfologis, sitologis, mekanis dan mikrobia. Vigor benih di  dalam  pertanaman  akan  tercermin  dalam kekuatan  tumbuh  benih  melalui  kecepatan tumbuh  benih  dan  keserempakan  tumbuh benih.  Kecepatan  tumbuh  benih  adalah persentase kecambah normal/etmal. Keserempakan tumbuh benih adalah persentase  kecambah  normal  kuat  pada periode perkecambahan tertentu yang keduanya  dilakukan  dalam  kondisi  optimum (Kartasapoetra, 2003).
Menurut Purnobasuki
(2011), perkecambahan  adalah  peristiwa  tumbuhnya
embrio  di  dalam  biji  menjadi  tanaman  baru. Perkecambahan  dapat  dilihat  dari  vigor  dan viabilitas biji. Vigor merupakan kemampuan biji  untuk  tumbuh  normal  pada  keadaan lingkungan  yang suboptimal (Sutopo, 1993). Benih yang performanya bagus disebut benih bervigor  tinggi  sedangkan  sebaliknya  adalah benih bervigor rendah. Vigor benih termasuk salah  satu  sifat-sifat  benih  yang  menentukan potensi  untuk  pemunculan  kecambah  yang cepat,  serempak,  dan  normal  pada  kondisi lingkungan yang bervariasi (Utami, 2013).

## Nilai Indeks
Perlakuan  perendaman  benih  dalam beberapa  konsentrasi  H 2 SO 4 memberikan pengaruh  berbeda  nyata  terhadap  persentase Nilai Indeks (NI) M. bracteata .
Table  4.  Nilai  Indeks  benih M.  bracteata dengan  perlakuan  perendaman  benih  dalam beberapa konsentrasi H 2 SO 4 selama 10 menit.
Konsentrasi H 2 SO 4 (%) Nilai Indeks 3 4,25 a 4 3,25 b 5 2,00 c
Angka – angka pada kolom yang sama diikuti oleh huruf kecil yang berbeda adalah berbeda nyata menurut uji DNMRT pada taraf 5%.
Tabel 4 menunjukkan bahwa perlakuan perendaman  benih  dalm  H 2 SO 4 memberikan pengaruh nyata terhadap kecepatan berkecambah  pada  benih  M. bracteata . Perlakuan  perendaman  benih  dalam  H 2 SO 4 dengan  konsentrasi  3%  berbeda  nyata dengan  perlakuan  perendaman  benih  dalam H 2 SO 4 dengan konsentrasi 4% dan 5%. Pada tabel  di  atas  dapat  dilihat  bahwa  kecepatan berkecambah  benih  tertinggi  terdapat  pada perlakuan  perendaman  benih  dalam  H 2 SO 4 dengan  konsentrasi  3%  dengan  kecepatan berkecambah  5,25%  sedangkan  kecepatan berkecambah  terendah  pada  konsentrasi  5% dengan  kecepatan  berkecambah  3,50%. Adanya  variasi  kecepatan  berkecambah benih M.  bracteata mulai  dari  kecepatan berkecambah tertinggi pada perlakuan dengan 3% sampai pada kecepatan berkecambah terendah pada perlakuan 5%.
Hal tersebut dipengaruhi oleh konsenterasi  dan  lama  waktu  perendaman
benih dalam H 2 SO 4 , pada perlakuan perendaman  H 2 SO 4 3%  kulit  biji  mengalami pelunakan yang optimal sehingga air dan gas dapat masuk dan embrio dapat berkecambah dengan  baik  sedangkan  pada  perlakuan dengan  konsentrasi  4%  dan  5%  kulit  biji mengalami  kerusakan  pada  fisik  benih  yang berlebihan  karena  konsentrasi  yang  tinggi sehingga  memicu  serangan  jamur  pada  awal perkecambahan.  Sutopo  (2004)  menyatakan bahwa  menurunnya  kualitas  benih  dapat diakibatkan karena kerusakan-kerusakan fisik pada benih yang memudahkan pathogen-pathogen tertentu
dapat berkembang dan menurunkan kualitas benih. Adanya pengaruh perlakuan perendaman  benih  dalam  H 2 SO 4 diduga selain  kemampuan  melunakkan  kulit  biji, H 2 SO 4 juga mampu membuang lapisan lignin pada  kulit  biji.  Perlakuan  perendaman  benih dengan  H 2 SO 4 3%  mampu  meningkatkan indeks  vigor  benih  lebih  baik  dibandingkan
Pengaruh perendaman benih Mucuna ....
DOI : 10.32663/ja.v%vi%i.977
perlakuan  lainnya.  Menurut  Kartasapoetra (1992)  indeks  vigor  benih  berhubungan  erat dengan  kecepatan  berkecambah  dari  suatu kelompok benih. Adrian (2011) menyebutkan  semakin  cepat  pertumbuhan kecambah  maka  semakin  tinggi  vigor kecambah.  Tinggi  rendahnya  vigor  benih akan  menggambarkan  kekuatan  tumbuh  dan pertumbuhan  kecambah.  Semakin  tinggi vigor maka kekuatan perkecambahan menjadi lebih baik.

## Potensi Tumbuh Maksimum (PTM)
Perlakuan  perendaman  benih  dalam beberapa  konsentrasi  H 2 SO 4 memberikan pengaruh  berbeda  nyata  terhadap  persentase PTM M. bracteata .
Tabel  5  menunjukkan  pada  perlakuan perendaman benih H 2 SO 4 memberikan pengaruh  nyata  terhadap  persentase  PTM
benih M.  bracteata .  Perlakuan  perendaman benih  dalam  H 2 SO 4 dengan  konsentrasi  3% berbeda nyata dengan perlakuan perendaman benih  dalam  H 2 SO 4 dengan  konsentrasi  4% dan 5%. Persentase PTM benih M. bracteata tertinggi terdapat pada perlakuan 3% sebesar 85,50% sedangkan persentase PTM terendah pada  perlakuan  perendaman  benih  dalam H 2 SO 4 dengan  konsentrasi  5%  sebesar 64,50%. Nilai PTM yang diperoleh berfluktuasi,  mulai  dari  yang  terendah  pada perlakuan  perendaman  benih  dalam  H 2 SO 4 dengan  konsentrasi  5%  dengan  nilai  PTM 64,50% hingga yang tertinggi pada perlakuan  dengan  konsentrasi  3%  dengan nilai  PTM  85,50%.  Variasi  data  tersebut disebabkan oleh faktor perlakuan perendaman benih dalam berbagai konsentrasi  H 2 SO 4 yang  mempengaruhi metabolisme benih secara lansung.
Tabel 5. Potensi tumbuh maksimum benih M. bracteata dengan perlakuan perendaman benih dalam beberapa konsentrasi H 2 SO 4 selama 10 menit.
Konsentrasi H 2 SO 4 (%) PTM (%) 3 85,50 a 4 75,00 b 5 64,50 c
Angka  –  angka  pada  kolom  yang  sama  diikuti  oleh  huruf  kecil  yang  berbeda  adalah  berbeda  nyata menurut uji DNMRT pada taraf 5%
Konsentrasi
H 2 SO 4 yang tinggi menyebabkan  metabolisme  benih  menjadi terganggu hingga berhenti, sehingga berimplikasi  pada  munculnya  kecambah abnormal  dan  benih  mati.  Konsentrasi  yang tinggi  dan  waktu  perendaman  yang  lama dapat menyebabkan sebagian besar enzim di dalam benih terdenaturasi, sehingga metabolisme  menjadi  lambat,  selain  itu konsentrasi yang tinggi juga dapat menyebabkan  rusaknya  bagian  penting  dari benih,  seperti  protoplasma.  Faustina et  al. (2011)  menyatakan  bahwa  konsentrasi  dan lamanya  waktu  perendaman  mempengaruhi tingkat  kerusakan  pada  biji,  semakin  tinggi dan  semakin  lama  waktu  perendaman  maka kerusakan biji juga semakin tinggi.
Potensi  tumbuh  maksimum  dapat menggambarkan  ukuran  kemampuan  benih untuk dapat tumbuh dan berkecambah secara maksimal. Potensi tumbuh maksimum diukur dengan  menghitung  jumlah  benih  yang berkecambah  secara  normal  maupun  benih yang  berkecambah  secara  abnormal.  Potensi tumbuh  maksimum  yang  tinggi  diperoleh dari  perlakuan  skarifikasi  yang  dilakukan dengan  baik,  sebaliknya  jika  skarifikasi dilakukan secara berlebihan dapat menyebabkan  imbibisi  yang  terlalu  cepat sehingga  dapat  menyebabkan  munculnya benih mati dan abnormal. Widiyawati (2011) menyatakan  dengan  merendam  benih  pada larutan asam kuat seperti H 2 SO 4 dan lainnya dapat melarutkan  lignin  dan  tannin  sehingga dapat membuka pori-pori testa dan
Pengaruh perendaman benih Mucuna ....
DOI : 10.32663/ja.v%vi%i.977
membantu  proses  minum  (imbibisi)  benih sehingga  kadar  air  benih  bertambah  dan meningkatkan kecepatan tumbuh benih.
Potensi tumbuh maksimum merupakan tolak  ukur  dari  viabilitas  total  yang memperlihatkan  kemampuan  benih  untuk sekedar  hidup,  baik  secara  langsung  oleh fenomena  pertumbuhannya  maupun  oleh gejala  metabolismenya.  Potensi  tumbuh maksimum  merupakan  salah  satu  parameter viabilitas  benih  (Sutopo,  2004).  Viabilitas benih  adalah  daya  hidup  benih  yang  dapat ditunjukkan  melalui  gejala  metabolisme  dan gejala pertumbuhan, selain itu daya kecambah  juga  merupakan  tolak  ukur parameter  viabilitas  potensial  benih  (Sadjad, 1993).
Pada umumnya viabilitas benih diartikan  sebagai  kemampuan  benih  untuk tumbuh  menjadi  kecambah  normal  pada lingkungan  yang optimum. Istilah lain untuk viabilitas benih adalah daya kecambah benih, persentase  kecambah  benih  atau  daya tumbuh benih. Viabilitas ini makin meningkat  dengan  bertambah  tuanya  benih dan  mencapai  perkecambahan  maksimum jauh  sebelum  masak  fisiologis  atau  sebelum tercapainya  berat  kering  maksimum,  pada saat  itu  benih  telah  mencapai  viabilitas maksimum  (100  persen)  yang  konstan  tetapi sesudah  itu  akan  menurun  sesuai  dengan keadaan lingkungan (Kamil, 1979). Besarnya nilai potensi tumbuh maksimum menunjukan kondisi  viabilitas  benih  yang  tinggi  (Justice dan Bass, 2002).

## KESIMPULAN
Konsentrasi terbaik untuk mematahkan dormansi M.  bracteata yakni  perendaman benih  dalam  H 2 SO 4 dengan  konsentrasi  3% selama  10  menit,  dengan  daya  kecambah 78,50%  dan  waktu  patah  dormansi  T 50 pada hari ke 8,75 HST.

## DAFTAR PUSTAKA
Adrian. (2011). Pengaruh Pemberian Hormon  BAP  Terhadap  Multiplikasi Tunas Tumbuhan kantong Senar (Nepenthes  alata  Blanco)  pada  Media
Murashige  &  Skoog  dengan  Teknik  In
Vitro .  [Skripsi] . Bogor  (ID):  Institut Pertanian Bogor .
Balai  Besar  Pengembangan  Pengujian  Mutu
Benih Tanaman Pangan dan
Hortikultura  (Balai  Besar  PPMB- TPH). (2010). Metode Pengujian Mutu
Benih Tanaman Pangan dan Hortikultura. Balai Besar Pengembangan  Pengujian  Mutu  Benih
Tanaman  Pangan  dan  Hortikultura.
Jakarta.
Bewley,  J.  D.  dan  Black,  M.  (1985).
Phiysiology  and  Biochemistry  of  seed. Berlin Heldelberg New York.
Bewley,  J.  D.  dan  Black,  M.  (1978).
Physiology and biochemistry ofseeds in relation to germination . New York.
Byrd,  H.  W.  (1983). Pedoman  Teknologi Benih (Terjemahan  Emid  Hamidin).
Pembimbing Massa. Jakarta.
Chiu,  S.B.  (2004). Botany,  Habits,  and Economic  Uses  of  (Mucuna  bracteata Dc)  Exkurz .  Lyman  Research  Center for Forestry and Agriculture.
Pontianak.
Copeland,  L.  O.  (1976). Principles  of  Seed Science  and  Technology .  Departement of  Crop  and  Soil  Science  Michigan State University.
Copeland,  L.  O.  dan  Mc.  Donald,  M.  B.
(1985). Principles of Seed Science and Technology . Burgess Publishing Company. New York.
Copeland,  L.O.  dan  Mc.  Donald,  M.B.
(1995). Principle  of  Seed  Science  and Technology . Chapman & Hall. London.
Curtis,  O.  F.  and  Clark.  (1950). An Introduction  to  Plant  Physiology .  1st Edition. Mc Graw- Hill Book Co. New York.
Faustina,  E.,  Prapto,  Y.  dan  Rohmanti,  R.
(2011).  Pengaruh  cara  pelepasan  aril dan  konsentrasi  kno 3 tahap  pematahan dormansi benih pepaya (Carica papaya). Jurnal  Fakultas  pertanian UGM. 1(1), 42-52.
Pengaruh perendaman benih Mucuna ....
DOI : 10.32663/ja.v%vi%i.977
Gardner, F.P., Pearce, R. B. dan, Mitchel, R.
L. (1991). Fisiologi Tanaman Budidaya .  Susilo,  H,  penerjemah.
Jakarta.  Universitas  Indonesia  (UI Press).
Harjadi,  S.S.  (1979). Pengantar  Agronomi . Gramedia. Jakarta.
Harjadi,  S.S.  1989. Dormansi  Benih. Prosiding  Khusus  Singkat  Pengujian Benih. Bogor.
Harjadi,  S.S.  1994. Dormansi  Benih. Prosidding  Kursus  Singkat  Pengujian Benih. Bogor.
Hartman,  H.  T.  dan  Kester,  D.  E..(1978).
Plant Progpagation . Third ed. Prentice Hall of India Private Ltd.
Hasnunidah, N. (2011). Fisiologi Tumbuhan . Universitas Lampung.
Bandar
Lampung.
Justice, O.L., dan Bass, L. N. (2002). Prinsip dan  Praktek  Penyimpanan  Benih. PT. Raga Grafindo Persada. Jakarta.
Kamil,  J.  (1979). Teknologi  Benih .  Padang:
Angkasa.
Kartasapoetra,  A.  G.  (1992). Teknologi
Benih Pengolahan Benih dan Tuntunan Praktikum . Rineka Cipta. Jakarta.
Kartasapoetra,  A.  G.  (2003).  Teknologi Benih, Pengolahan Benih dan Tuntunan  Praktikum. Jurnal  Online Agroekoteknologi, 2(2), 803 – 812.
Karyudi, dan Siagian. N. (2001). Perbanyakan  Tanaman  Penutup  Tanah Mucuna  bracteata . Warta  Perkaretan. 24(1),25-36.
Kuswanto, H. (1996).
Dasar-Dasar
Teknologi,  Produksi  dan  Sertifikasi Benih .  Grasindo. Jakarta.
Lakitan.  B. (1997). Fisiologi Tumbuhan  dan Perkembangan  Tanaman .  PT  Raja Grafindo Persada. Jakarta.
Lestari.  M.  (1998). Pengaruh  Tingkat
Kematangan  Buah  Enau  (Arenga pinnata)  Pada  Beberapa  Daerah Spektrum  Cahaya [Skripsi].  Fakultas Pertanian Universitas Andalas. Padang.
Masano. (1989). Perkecambahan benih aren . Duta  Rimba.  Perum  Perhutani.  hal  24- 30.
Mathews,  C.,  (1998). The  Introduction  and Establishment  of  a  New  Leguminous Cover  Crop,  Mucuna  bracteata  under Oil  Palm  in  Malaysia .  The  Planter. Kuala Lumpur.
Nugroh,  P.A.,  Istianto,  Siagian,  N.    dan Karyudi.  (2006). Potensi  (Mucuna bracteata)  dalam  Pengembalian  Hara pada  Areal  Karet  TBM .  Proseding
Lokakarya Nasional
Budidaya
Tanaman Karet. Medan.
Nugroh,  P.A.,  Istianto,  Siagian,  N.    dan Karyudi.  (2007). Dinamika  Populasi Mikrobia  Tanah  di  bawah  Naungan (Mucuna  bracteata)  pada  Areal  Karet yang  Menghasilkan. Balai  Penelitian Karet Sungai Putih. Medan.
Othman,  K.  dan  Baharudin,  A.  H.(2015).
The  total  factor  productivity  in strategic  food  crops  industry  of Malaysia. Asian Journal of Agriculture and  Rural  Development .  5  (5),  124- 136.
Pontoh  J.  (2004).
Sifat-Sifat  Pati  dan Pemanfaatannya
dalam Produk Pangan  dan  Industri  di  dalam . Pengembangan Tanaman
Aren. Prosiding  Seminar  Nasional  Aren;
Tondano,    9    Juni  2004.    Manado. Badan  Penelitian      dan  Pengembangan Pertanian. Pusat Penelitian dan
Pengembangan Perkebunan. Balai Penelitian Tanaman Kelapa  dan Palma Lain.
Pratiwi,  I.  (2016). Pengaruh  Skarifikasi  dan Lama  Perendaman  dengan  Asam Sulfat  (H2SO4)  Terhadap  Pematahan Dormansi Benih Enau ( Arenga pinnata Merr .)  [Skripsi].  Fakultas  Pertanian Universitas Andalas. Padang.
Purnobasuki.  H.  (2011).  Perkecambahan. http//:  skp.  unair.  ac.id/  repositori/ Guru/ Perkecambahan
Hery Purnobasuki  [Internet].  [diunduh  23 Mei 2011]. pdf 23 hal.
Pengaruh perendaman benih Mucuna ....
DOI : 10.32663/ja.v%vi%i.977
Sadjad,  S.  (1975). Proses  Metabolisme Perkecambahan  Benih  dalam  dasar- dasar  Teknologi  benih .  Capita  selekta. Bogor.
Sadjad,,  S.  (1980). Panduan  Pembinaan Mutu  Benih  Tanaman  Kehutanan  di Indonesia .  Institut  Pertanian  Bogor. Bogor.
Sadjad,  S.  (1993). Dari  Benih  Keapada Benih .  PT  Gramedia  Widiasarana Indonesia. Jakarta.
Saleh, M. S. (2002). Pengembangan Teknologi  Benih  Guna  Mendukung
Budidaya Tanaman Aren dalam Industr  Benih  di  Indonesia  Aspek Penunjang Pengembangan . Laboratorium  Ilmu  dan  Teknologi Benih IPB. Bogor. hal 15-82.
Saleh,  M.  S.  (2004). Pematahan  Dormansi Benih Aren Secara Fisik Pada Berbagai Lama Ekstraksi Buah . Agrosains 6 (2):79-90.
Sari,  H.  P.  (2012). Pertumbuhan  dan  Daya
Kecambah (Mucuna bracteata) melalui
Pematahan  Dormansi  dan  Pemberian
Zat Pengatur Giberelin (GA3) [Skripsi].  Medan  (ID):  Universitas Sumatera Utara.
Sastrosayono,  S.  (2005). Budidaya  Kelapa Sawit . Agromedia Pustaka. Jakarta. Schmidth  L.  (2002). Pedoman  Penanganan Benih  Tanaman  Hutan  Tropis  Dan Subtropis . Direktorat
Jendral Rehabilitasi  Lahan  Dan  Perhutanan Sosial Departemen Kehutanan. Jakarta.
Siagian,  N.  2001. Potensi  dan  Pemanfaatan Mucuna  bracteata  sebagai  Kacangan Penutup  Tanah  di  Perkebunan  Karet.
Pusat  Penelitian  Karet.  Warta  20(1-3), 32-43
Siagian, N. (2003). Potensi dan Pemanfaatan
Mucuna  bracteata Sebagai  Kacangan Penutup  Tanah  di  Perkebunan  Karet. Warta  Pusat  Penelitian  Karet .  24(1), 5-12 .
Siregar,  A.F.  (2010).  Pengaruh  pematahan dormansi terhadap daya
perkecambahan dan pertumbuhan vegetatif  dan  pertumbuhan  tanaman
Mucuna  ( Mucuna  bracteata D.C.). Jurnal  online  Agroekoteknologi. 2(2), 803-812.
Subronto.  2002. Penggunaan  Kacangan Penutup  Tanah  (Mucuna  bracteata) Pada  Pertanaman  Kelapa  Sawit .
Warta  Pusat  Penelitian  Kelapa  Sawit.
Medan.
Sudikno, T. S. (1991). Beberapa usaha untuk mempercepat perkecambahan biji melinjo  ( Gnetum  gnemon  L. ).  Agric. Sci. 4(6),257-272.
Sulaiman,  F.,  Dwi,  P.  P.,  dan  Tresna,  R. (2008).  Studi  pematahan  dormansi benih  ( Mucuna  bracteata) . Jurnal Online  Agroekoteknologi .  2(2),803- 812.
Sulaiman,  F.,  Harun,  M.  U.  Kurniawan,  A.
(2010). Perkecambahan  Benih  yang disimpan Pada Suhu dan Periode yang Berbeda .  Jurusan  Budidaya  Pertanian
Fakultas Pertanian Universitas Sriwijaya. Sutarto  dan  Ilham.  (1993).  Pendayagunaan Tanaman Kacang-kacangan pada Lahan  Kritis.  Yayasan  Prosia  Bogor dan MAB Indonesia, UNESCO/ROSTEA, Jakarta. Sutopo, L. (1984). Teknologi Benih . Rajawali. Jakarta.
Sutopo, L. (2003.) Teknologi Benih . PT Raja Grafindo Persada . Jakarta. Sutopo, L.(2002). Teknologi Benih. PT. Raja Grafindo Persada. Jakarta.
Sutopo ,  L. (2004). Teknologi Benih. Jurnal Online  Agroekoteknologi. 2(2),  803- 812.
Utami,  E.P.  (2013).  P erlakuan  Priming Benih  untuk  Mempertahankan  Vigor Benih Kacang Panjang (Vigna unguiculata)  Selama  Penyimpanan [Skripsi].  Departemen  Agronomi  dan Hortikultura,  Institut  Pertanian  Bogor.
Bogor.
Wardiyono,  (2006). Detail  data  imperata cylindrical . www.warintek.com diakses tanggal 22 juli 2008.
Widyawati,  N.,  Tohari,  P.  Yudono,  dan Soemardi, I. (2009).  Permeabilitas dan
Pengaruh perendaman benih Mucuna ....
DOI : 10.32663/ja.v%vi%i.977
perkecambahan  benih      aren  ( Arenga pinnata (Wumb.)      Merr.). Jurnal
Agronomi Indonesia : hal 152-158.
Widyawati,  N.  (2011).  Sukses  Investasi
Masa  Depan  Dengan  Bertanam  Pohon Aren. Ed. I. Yogyakarta: Lily Publiser. 104 hal. Winarni,  T,  B.  (2009). Pengaruh  Perlakuan Pendahuluan dan Berat Benih Terhadap Perkecambahan Benih Kayu Afrika ( Maesopsis eminii Engl .)
[Skripsi].  Fakultas  Kehutanan.  Institut Pertanian Bogor.