Abstrak— Pulau Poteran merupakan salah satu pulau terbesar yang  dimiliki  oleh  Kabupaten  Sumenep  dengan  sektor  prioritas pengembangan  sumber  daya  perkebunan.  Hasil  penelitian sebelumnya  menunjukan  kandungan  bahan  organik  tanah  pulau Poteran  sangat  rendah.  Penelitian  ini  dilakukan  untuk mengetahui potensi eksoenzim yang dihasilkan bakteri tanah desa Talango, pulau Poteran, dalam mendegradasi bahan organik, dan mengetahui  genus  bakteri  tersebut.  Potensi  eksoenzim  dihitung dengan  indeks  amilolitik  pada  medium  starch  agar,  indeks proteolitik  pada  medium  Bushnell-Haas  Casein  1%,  indeks selulolitik  pada  CMC  agar,  dan  indeks  lipolitik  pada  Tween  80- pepton agar. Karakterisasi bakteri dilakukan menggunakan kunci dikotomi  berdasarkan  buku  Bergey’s  Manual  Determinative  of Bacteriology  hingga  tingkat  genus.  Penelitian  ini  mendapatkan empat  isolat  bakteri  tanah  desa  Talango  yang  berpotensi proteolitik  dan  selulolitik,  dua  isolat  diantaranya  berpotensi amilolitik,  dan  dua  isolat  berpotensi  lipolitik.  Setelah  dilakukan karakterisasi  dan  identifikasi  kelima  isolat  bakteri  tersebut cenderung terbagi ke dalam dua genus yaitu Corynebaterium, dan Aeromonas.
Kata Kunci—bahan organik, bakteri, desa Talango.

## I. PENDAHULUAN
ULAU Poteran merupakan salah satu pulau terbesar yang dimiliki oleh Kabupaten Sumenep dengan luas 393.888 m 2 [1].  Hasil  penelitian  [2],  menunjukkan  bahwa  pulau  Poteran memiliki sektor yang menjadi prioritas pengembangan sumber daya  yang  ada  adalah  perkebunan,  yang  paling  banyak diunggulkan  dari  pulau  Poteran  adalah  pertanian  lahan  kering dan  perkebunan  seperti  jagung,  ubi  kayu,  kelapa,  tembakau, dll. [3].
Bahan  organik  tanah  adalah  semua  jenis  senyawa  organik yang  terdapat  di  dalam  tanah,  termasuk  serasah,  fraksi  bahan organik  ringan,  biomassa  mikroorganisme,  bahan  organik terlarut di dalam air, dan bahan organik yang stabil atau humus [4].  Kandungan  bahan  organik  merupakan  kunci  ketahanan terhadap  kekeringan  dan  kelestarian  produksi  pangan  [5]. Bahan  organik  berperan  dalam  pelapukan  dan  proses dekomposisi mineral tanah, sumber hara tanaman, pembentukan struktur tanah stabil dan pengaruh langsung pada pertumbuhan  dan perkembangan  tanaman  di  bawah  kondisi tertentu [6].
Hasil  penelitian  [7],  menunjukkan  bahwa kandungan bahan organik  tanah  di  Madura  adalah  89%  dengan  klas  sangat rendah  bahan  organik  (<  2%)  dan  11%  dengan  kelas  rendah
bahan  organik  (>2%). Kondisi  ini  harus  menjadi  perhatian utama  dalam  pengelolaan  tanah  khususnya  pulau  Poteran, Madura.  Peningkatkan  kandungan  karbon  dalam  tanah merupakan suatu keharusan dalam pengelolaan lahan.
Sisa  tanaman  yang  telah  mati  banyak  mengandung  bahan organik  seperti  amilum,  selulosa,  dan  protein  [8].  Bakteri memerlukan  bahan  organik  seperti  karbohidrat,  protein,  dan lemak  untuk  menghasilkan  energi  dan  sebagai  sumber karbonnya.  Bakteri  memiliki  eksoenzim  yang  dapat  memecah makromolekul karbohidrat, protein, dan lemak [9]. Eksoenzim hidrolitik yang dihasilkan bakteri berguna untuk mendegradasi polimer bahan organik menjadi bahan organik sederhana [10]. Selama  proses  perubahan  dan  pelarutan  bahan  organik,  unsur hara  akan  bebas  menjadi  bentuk  yang  larut  dan  dapat  diserap tanaman.  Sebelum  mengalami  proses  perubahan,  sisa  hewan dan  tumbuhan  ini  tidak  berguna  bagi  tanaman,  karena  unsur hara masih dalam bentuk terikat yang tidak dapat diserap oleh tanaman [11].
Pulau  Poteran  memiliki  tipe  pertanian  lahan  kering  dengan kadar bahan organik di dalam tanahnya rendah [7]. Salah satu solusi  yang  ditawarkan  adalah  mendegradasi  bahan  organik sisa  tanaman  atau  hewan  menjadi  bentuk  terlarut  dengan menggunakan  bakteri  tanah,  sehingga  dapat  menaikkan kandungan  unsur  hara  pada  tanah  tersebut.  Literatur  [12], menambahkan  bakteri  perombak  bahan  organik  digunakan sebagai  strategi  untuk  mempercepat  proses  dekomposisi  sisa- sisa  tumbuhan  dan  hewan,  selain  untuk  meningkatkan biomassa  dan  aktivitas  mikroba tanah, juga dapat mengurangi penyakit,  larva  insekta,  biji  gulma,  volume  bahan  buangan, sehingga  pemanfaatannya  dapat  meningkatkan  kesuburan tanah.  Berdasarkan  fakta  tersebut  isolasi  dan  seleksi  awal diperlukan  untuk  menentukan  jenis  bakteri  tanah  yang berperan dan berpotensi untuk dikembangkan serta dimanfaatkan  secara  khusus  dalam  degradasi  bahan  organik seperti  amilum,  selulosa,  protein,  dan  lemak.  Sehingga  dapat meningkatkan kesuburan tanah serta meningkatkan produktivitas hasil pertanian pulau Poteran.

## II. METODOLOGI

## A. Waktu dan Tempat Penelitian
Penelitian  dilakukan  pada  bulan  September  2013  hingga Maret  2014  di  Laboratorium  Mikrobiologi  dan  Bioteknologi Jurusan  Biologi,  Fakultas  Matematika  dan  Ilmu  pengetahuan

## Bakteri Tanah Pendegradasi Bahan Organik Desa Talango, Pulau Poteran, Sumenep
Muhammad Andry Prio Utomo dan Maya Shovitri Jurusan Biologi, Fakultas MIPA, Institut Teknologi Sepuluh Nopember (ITS) Jl. Arief Rahman Hakim, Surabaya 60111 Indonesia
e-mail: maya@bio.its.ac.id
P
Alam, Institut Teknologi Sepuluh Nopember.

## B. Pengambilan Sampel Tanah
Sampel  tanah  diambil  pada desa Talango dengan koordinat S:  07 o 03’48.0”  dan  E:  113 o 57’02.8”.  Pada  desa  talango ditentukan  lima  buah  titik  pengambilan  sampel  pada kedalaman 10 cm di daerah sekitar rhizosfer.

## C. Isolasi dan Purifikasi Bakteri
Isolasi  dilakukan  dengan  cara  pengenceran  bertingkat hingga konsentrasi 10 -6 , kemudian dilanjutkan dengan metode sebar  dilakukan  secara  aseptis  di  dalam  LAF.  Dari pengenceran  10 -1 hingga  10 -6 diambil  100  µl  larutan  dengan menggunakan  mikropipet  kemudian  dipindahkan  ke  dalam cawan  Petri  yang  berisi  media  Nutrient  Agar  (NA)  dan diinkubasi  pada  suhu  37 ⁰ C  selama  48  jam.  Koloni  bakteri dengan  karakteristik  tersendiri  kemudian  dipurifikasi  dengan metode  16  gores  supaya  didapatkan  isolat  yang  murni. Kemudian  dilakukan  pewarnaan  sederhana  dengan  methylene blue  dan  dilanjutkan  dengan  pewarnaan  Gram  untuk memastikan kemurnian isolat bakteri.

## D. Uji Potensi Amilolitik, Proteolitik, Selulolitik, dan Lipolitik
Potensi  amilolitik  isolat  bakteri dilakukan dengan  inokulasi titik  pada  medium  starch  agar  dan  diinkubasi  selama  48  jam pada  suhu  ruang.  Setelah  masa  inkubasi  medium  starch  agar digenangi  dengan  larutan  Gram  iodine,  diamati  zona  bening yang terbentuk [13]. Pengukuran potensi proteolitik dilakukan pada  medium  Bushnell-Haas  casein  1%  agar  dan  diinkubasi selama  48  jam  pada  suhu  ruang  [14].  Isolat  yang  terdeteksi memiliki potensi proteolitik menunjukkan adanya zona bening disekitar  koloni  bakteri.  Pengukuran  potensi  selulolitik  secara kualitatif  dilakukan  pada  medium  CMC  agar  dan  diinkubasi selama  48  jam  pada  suhu  ruang.  Setelah  inkubasi  selama  48 jam,  medium  pertumbuhan  digenangi  dengan  pewarna  congo red  0,1%  selama  sepuluh  menit  dan  dibilas  dengan menggunakan  larutan  NaCl  0,9%.  Isolat  yang  menunjukkan zona  bening  disekitar  koloni  menandakan  isolat  tersebut memiliki  potensi  selulolitik  [15].  Pengukuran  potensi  lipolitik dilakukan pada medium Tween 80-Pepton agar dan diinkubasi selama  96  jam  pada  suhu  ruang.  Isolat  yang  terdeteksi memiliki  potensi  lipolitik  menunjukkan  adanya  zona presipitasi  kalsium  monostearat  di  sekitar  koloni  [16].  Indeks amilolitik,  proteolitik,  selulolitik,  dan  lipolitik  diukur menggunakan rumus berikut:

## (1)
Keterangan: IA/IP/IS/IL : Indeks amilolitik, proteolitik, selulolitik, dan lipolitik
X1
: Rata-rata diameter zona bening
X2 : Rata-rata diameter koloni

## E. Karakterisasi dan Identifikasi
Isolat  bakteri  diidentifikasi  karakter  biokimianya  menurut diagram
dikotomi berdasarkan Bergey’s Manual Determinative of Bacteriology [17]. Isolat bakteri diidentifikasi  hingga  tingkat  genus.  Uji  biokimia  yang dilakukan  meliputi  pewarnaan  endospora,  pewarnaan  tahan asam,  uji  oksidase,  uji  katalase,  uji  fermentasi  glukosa,  uji fermentasi  laktosa,  uji  fermentasi  mannitol,  uji  indol,  uji pembentukan  H 2 S,  uji  ornithine  decarboxylase,  uji  urease, ketahanan  terhadap  NaCl  7%,  uji  kebutuhan  oksigen,  uji penggunaan  sitrat,  dan  uji  motilitas.  Isolat  bakteri  yang digunakan untuk proses identifikasi maksimal berumur 24 jam.

## III. HASIL DAN PEMBAHASAN

## A. Degradasi Bahan Organik
Dari hasil isolasi didapatkan lima isolat bakteri yaitu dengan kode  TA  1,  TA  2,  TA  3,  TA  4,  dan  TA  5.  Isolat  yang menghasilkan  zona  bening  dalam  medium  starch  agar  setelah diwarnai  dengan  Gram-iodin  menandakan  isolat  tersebut memiliki  potensi  amilolitik  [13].  Isolat  yang  menghasilkan zona  bening  dalam  medium  Bushnell-Haas  Casein  1% menandakan isolat tersebut memiliki potensi proteolitik. Isolat yang  memiliki  zona  bening  pada  medium  CMC  setelah diwarnai  dengan  pewarna  congo  red  menandakan  isolat tersebut  memiliki  aktivitas  selulolitik  [18].  Isolat  yang menghasilkan  zona  presipitasi  berwarna  keruh  pada  sekitar koloninya  dalam  medium  Tween  80-Pepton  agar  yang berwarna bening menandakan isolat tersebut memiliki aktivitas lipolitik  [19].  Hasil  pengukuran  indeks  amilolitik,  proteolitik, selulolitik, dan lipolitik terdapat dalam Tabel 1.
Hasil uji potensi amilolitik menunjukkan bahwa hanya isolat TA  3  dan  TA  4  saja  yang  terdeteksi  memiliki  potensi amilolitik  dengan  nilai  IA  masing-masing  0,96  dan  0,45. Aktivitas  isolat  bakteri  amilolitik  membutuhkan  enzim amilase.  Enzim  amilase  pada  bakteri  terdiri  dari α -amilase, yang  berfungsi  memutus  ikatan  glukosil,  memproduksi  gula yang berukuran kecil dekstrin dengan glukosa dan maltose, β - amilase memutuskan ikatan maltosa dari ujung non pereduksi. Enzim amilase yang dihasilkan bakteri sangat bermanfaat bagi bidang industri makanan, fermentasi, dan farmasi [20].
Pada uji potensi proteolitik semua isolat menunjukkan zona bening  disekitar  koloni  pada  medium  Bushnell-Haas  Casein 1%  agar  dengan  nilai  IP  masing  masing  TA  1  (1,3),  TA  2 (3,3),  TA  3  (2,7),  dan  TA  4  (1).  Bakteri  dengan  potensi proteolitik  yang  didapatkan  memiliki  enzim  protease.  Enzim
Tabel 1.
Nilai indeks degradasi bahan organik pada isolat bakteri desa Talango
KODE IA IP IS IL TA 1 0 1,3 0,48 0,06 TA 2 0 3,3 0,21 0 TA 3 0,96 2,7 2,5 0 TA 4 0,45 1 4,24 0,23
IA/ IP/ IS/ IL =
protease merupakan enzim hidrolitik yang dapat menghidrolisis protein dengan penambahan air diantara ikatan peptida  dan  memutusnya  menjadi  peptide  yang  lebih  kecil pada  pelarut  organik  [21].  Selain  bermanfaat  untuk  memecah senyawa  protein  di  dalam  tanah,  bakteri  proteolitik  dapat menghasilkan  enzim  protease  yang  berguna  dalam  dunia industri diantaranya untuk menghilangkan noda, mengeringkan luka, dan detergen rumah tangga [22].
Pada  uji  potensi  selulolitik  semua  isolat  menunjukkan potensi selulolitik dengan nilai IS masing-masing TA 1 (0,48), TA  2  (0,21),  TA  3  (2,5),  dan  TA  4  (4,24).  Sistem  enzim selulosa terdiri dari kelas enzim ekstraseluler yang larut dalam air  yaitu:  1,4- β -endoglukanase,  1,4- β -eksoglukanase,  dan β - glukosidase.  Ketiga  enzim  tersebut  berkerja  sama  untuk menghidrolisis  selulosa  secara  total  hingga  menjadi  glukosa sehingga  menjadi  H 2 O  dan  CO 2 [23].  Enzim  selulase  yang dihasilkan  isolat  bakteri  tanah  selain  bermanfaat  untuk memecah  senyawa  lignoselulosik,  juga  dapat  diaplikasikan dalam industri fermentasi gula dan ethanol, asam organik, dan detergen [24].
Pada uji potensi lipolitik hanya didapatkan dua isolat bakteri yang  memiliki  zona  presipitasi  kalsium  monostearat  pada sekitar  koloni  bakteri  yaitu  TA  1  (0,06)  dan  TA  4  (0,23). Lemak  merupakan  polimer  yang  tidak  larut  dalam  air  dan memiliki  ikatan  ester  yang  susah  didegradasi  oleh  bakteri. Kompleks  kalsium  terlihat  sebagai  kristal  yang  tak  terlarut disekitar daerah inokulasi. Tween 80 paling sering dihidrolisis oleh  oleh  enzim  lipase  karena  mengandung  banyak  ester  dan asam  oleat  [16].  Lipase  merupakan  enzim  kunci  dalam perkembangan bioteknologi untuk aplikasi pada dunia industri, seperti  teknologi  makanan,  detergen,  industri  kimia,  dan  ilmu biomedis  [25].  Zona  bening  hasil  pada  medium uji  amilolitik, proteolitik, selulolitik, dan lipolitik terdapat dalam Gambar 1.

## 3.2 Karakterisasi dan Idenfikasi Isolat Bakteri
Penelitian  ini  mendapatkan  dua  morfologi  sel  bakteri  yang berbeda  yaitu  batang  Gram  positif  dan  batang  Gram  negatif. Isolat bakteri yang memiliki morfologi sel batang Gram positif adalah isolat bakteri TA 3 dan TA 4. Sedangkan, isolat bakteri TA  1  dan  TA  2  memiliki  morfologi  batang  Gram  negatif. Morfologi  sel  isolat  TA  1,  TA  2,  TA  3,  dan  TA  4  terdapat pada Gambar 2.
Isolat  bakteri  TA  3  dan  TA  4  memiliki  kesamaan karakteristik dengan genus Corynebacterium. Corynebacterium  merupakan  bakteri  yang  non  motil,  tidak membentuk  endospora,  pleomorfik,  Gram  positif,  dengan konten  G+C  yang  tinggi  pada  DNAnya.  Corynebacterium masuk  dalam  kelas  Actinobacteria  dan  merupakan  salah  satu anggota dari kelompok Corynebacterium, Mycobacterium, dan Nocardia (CMN) [26].
Isolat  bakteri  TA  1  dan  TA  2  memiliki  kemiripan karakteristik  dengan  genus  Aeromonas.  Aeromonas  menurut [27],  memiliki  karakteristik  sel  bentuk  batang  lurus. Kemoorganotrof.  Mampu  mengoksidasi  atau  fermentasi  D- glukosa.  Mampu  memproduksi  eksoenzim  seperti  amilase, DNase,  esterase,  peptidase,  dan  enzim  hidrolitik  lainnya. Biasanya  menghasilkan  reasksi  oksidase positif. Suhu optimal pertumbuhannya adalah 22 ° C hingga 37 ° C.

## IV. KESIMPULAN
Semua isolat bakteri yang didapatkan memiliki kemampuan untuk  mendegradasi  bahan  organik.  Sebanyak  2  isolat  bakteri menunjukkan  potensi  amilolitik,  semua  isolat  bakteri menunjukkan  potensi  proteolitik  dan  selulolitik,  dan  2  isolat bakteri menunjukkan potensi lipolitik. Isolat bakteri TA 3 dan TA 4 memiliki kemiripan dengan genus Corynebacterium, dan isolat  TA  1  dan  TA  2  memiliki  kemiripan  dengan  genus Aeromonas. Untuk penelitian selanjutnya sebaiknya dilakukan pengukuran  aktivitas  enzim  secara  kuantitatif  dari  bakteri pendegradasi bahan organik desa Talango, dan perlu dilakukan uji  patogenitas  isolat  bakteri  pendegradasi  bahan  organik  dari desa Talango terhadap tanaman pertanian.

## UCAPAN TERIMA KASIH
Penulis mengucapkan banyak terima kasih kepada ibu Tutik Nurhidayati,  S.Si.,  M.Si.,  dan  bapak  Aunurohim,  S.Si.,  DEA atas kritik dan sarannya dalam penulisan jurnal ilmiah ini.
Gambar. 1. Zona bening yang menunjukkan aktivitas amilolitik, proteolitik, selulolitik, dan lipolitik dari isolat Corynebacterium TA 3.
Gambar.  2.  Morfologi  sel isolat  bakteri TA 1, TA 2, TA 3, TA 4, dan TA 5. Ukuran yang ditampilkan bukan merupakan ukuran sebenarnya.

## DAFTAR PUSTAKA
[1] L.N.  Hostiadi,  “Wisata  kampung  Nelayan  Di  Pulau  Poteran  Madura”, Skripsi.  Program  Studi  Teknik  Arsitektur,  Universitas  Kristen  Petra, Surabaya, Indonesia (2011).
[2] Romadhon.  “Kajian  Indeks  Kepekaan  Lingkungan  Dalam  Penyusunan Arahan  Pengembangan  Pulau  Kecil  Di  Kabupaten  Sumenep  (Studi Kasus  Pulau  Sapudi,  Poteran,  dan  Girilayang).”  Embryo  Vol.  5  (1) (2008) 1-13.
[3] Direktori  Pulau-Pulau  Kecil  Indonesia.  (2013,  September  10).  Pulau
Poteran [Online].
Available:
http://www.ppkkp3k.kkp.go.id/direktoripulau/index.php/public_c/pulau _info/369
[4] F.J. Stevenson. Humus Chemistry: Genesis, Composition, Reactions 2th ed. New York: John Wiley and Sons, Inc (1994).
[5] A.  Bot,  and  J.  Benites.  “The  importance  of  soil  organic  matter  Key  to drought-resistant  soil  and  sustained  food  and  production.”  FAO  Soils
Bulletin Vol. 80 (2005).
[6] M.  Schnitzer,  and  S.U.  Khan.  Soil  Organic  Matter  4 th impression.
Amsterdam: Elsevier Science Publishers (1989).
[7] S.  Supriyadi.  “Kandungan  Bahan  Organik  Sebagai  Dasar  Pengelolaan Tanah Di Lahan Kering Madura.” Embryo Vol. 5 (2) (2008) 176-183.
[8] I.K.  Knabner.  “The  macromolecular  organic  composition  of  plant  and microbial  residues  as  inputs  to  soil  organic  matter.”  Soil  Biology  and Biochemistry Vol. 34 (2002) 139-162.
[9] G.J. Tortora, B.R. Funke, and C.L. Case. Microbiology An Introduction
11 th Edition. USA: Benjamin Cummings (2012).
[10] J.W. Lengeler, G. Drews, and H.S. Schlegel. Biology of the Prokaryotes. Oxford: Blackwell Science (1999).
[11] D.  Setyorini,  R.  Saraswati,  and  E.K.  Anwar.  Kompos.  Bogor:  Balai Besar  Penelitian  dan  Pengembangan  Sumberdaya  Lahan  Pertanian
(2006).
[12] R. Saraswati, E. Santosa, and E. Yuniarti. Organisme Perombak Bahan Organik. Bogor: Balai Besar Penelitian dan Pengembangan Sumberdaya Lahan Pertanian (2004).
[13] Harley,  and  L.M.  Prescott.  Laboratory  Exercise  in  Microbiology  5 th
Edition. USA: Mc Graw Hill (2002).
[14] A.A.  Jadhav,  K.S.  Ismail,  M.A.  Harale,  S.V.  Gadre,  dan  M.T. Williamson.  “Study  of  Protease  Enzyme  from  Bacillus  Species  and  its Application  as  a  Contact  Lens  Cleanser.”  British  Biomedical  Bulletin Vol. 2 (2) (2014) 293-302.
[15] A.  Meryandini,  W.  Widosari,  B.  Maranatha,  T.C.  Sunarti,  N. Rachmania, and H. Satria. “Isolasi Bakteri Selulolitik dan Karakterisasi Enzimnya.” MAKARA SAINS Vol. 13 (1) (2009) 33-38.
[16] P.  Gupta,  L.S.B.  Upadhyay,  dan  R.  Shrisvastava.  “Lipase  Catalyzed- transesterification  of  Vegetable  Oils  by  Lipolytic  Bacteria”.  Research Journal of Microbiology Vol. 6 (2011) 281-288.
[17] J.G.  Holt,  N.R.  Krig,  P.  Sneath,  J.  Staley,  and  S.  Williams.  Bergey’s manual  Determinative  of  Bacteriology  9 th Edition.  Philadelphia,  USA: Lipincott Williams and Wilkins Company (1994).
[18] R.M.  Teather,  and  P.J.  Wood.  “Use  of  Congo  Red-Polysaccharide Interaction in Enumeration and Characterization of Cellulolitic Bacteria from  the  Bovine  Rumen”.  Applied  and  Environmental  Microbiology Vol. 43 (4) (1982) 777-780.
[19] R.  Gupta,  N.  Gupta,  dan  P.  Rathi.  “Bacterial  lipases:  an  overview  of production,  purification,  and  biochemical  properties.”  Appl.  Microbiol
Biotechnol Vol. 64 (2004) 763-781.
[20] P.M.  de  Souza,  and  P.O.  e  Magalhães.  “Application  Of  Microbial Α - Amylase  In  Industry  –  A  Review.”  Brazilian  Journal  of  Microbiology Vol. 41 (2010) 850-861.
[21] A.  Kaur,  S.  Ahuja,  and  G.  Sharma.  “Isolation  of  Protease  Producing Bacteria  from  Soil  and  Genomic  Library  Construction  of  Protease Gene.”  Journal  of  Chemical,  Biological  and  Physical  Sciences  Vol.  4
(1) (2013) 216-219.
[22] M.T.  Madigan,  J.M.  Martinko,  D.A.  Stahl,  and  D.P.  Clark.  BROCK Biology  of  Microorganisms  13 th Edition.  San  Francisco:  Benjamin Cummings (2012).
[23] J.P.  Aubert,  P.  Beguin,  and  J.  Millet.  “Biochemistry  and  Genetics  of cellulose  degradation,  fungal  and  bacterial  enzyme  systems  and  their manipulation.” FEMS Symposium. Vol. 43 (1987) 11-30.
[24] D.  Barman,  Z.A.  Saud,  M.R.  Habib,  M.F.  Islam,  K.  Hossain,  dan  T. Yeasmin.  “Isolation  of  Cellulolytic  Bacterial  Strains  from  Soil  for Effective  and  Efficient  Bioconversion  of  Solid  Waste.”  Life  Sciences and Medicine Research Vol. 25 (2011) 1-7.
[25] A.  Pandey,  S.  Benjamin,  C.R.  Soccol,  P.  Nigam,  N.  Krieger, and  U.T. Soccol.  “The  realm  of  microbial  lipases  in  biotechnology”.  Biotechnol Appl Biochem Vol. 29 (1999) 119–131.
[26] C.L.  Gyles,  J.F.  Prescott,  G.  Songer,  and  C.O.  Thoen.  Pathogenesis  of Bacterial Infection in Animals. USA: Wiley-Black Well (2010).
[27] G.M.  Garrity,  D.J.  Brenner,  N.R.  Krieg,  dan  J.R.  Staley.  Bergey’s Manual  Systematics  of  Bacteriology,  Volume  2:  The  Proteobacteria, Part B: The Gammaproteobacteria. USA: Williams dan Wilkins (2005).