## 138
Jurnal Agrotek Tropika 5(3): 138-143, 2017 J.  Agrotek  Tropika.  ISSN  2337-4993 Vol. 5, No. 3: 138 - 143, September 2017

## SELEKSI LIMA ISOLAT FUNGI MIKORIZA ARBUSKULAR
UNTUK KELAPA SAWIT ( Elaeis guineensis Jacq.) DI PEMBIBITAN

## Maria Viva Rini, Kusuma Oka Pertiwi & Hidayat Saputra
Jurusan Agroteknologi Fakultas Pertanian Universitas Lampung Jl. Sumantri Brojonegoro No.1, Bandar Lampung, Lampung 35145 E-mail: kusumaoka28@gmail.com
.

## ABSTRAK
Fungi Mikoriza Arbuskular (FMA) merupakan simbiosis antara fungi tertentu dengan akar tanaman dan memiliki kemampuan bersimbiosis hampir dengan 90% tanaman.  FMA tidak memiliki inang yang spesifik, namun tingkat infektivitas dan efektivitasnya berbeda.  Pemilihan jenis FMA yang tepat untuk kelapa sawit diharapkan dapat meningkatkan pertumbuhan bibit kelapa sawit di lapangan.  Penelitian ini bertujuan  untuk menentukan isolat FMA yang terbaik untuk pembibitan kelapa sawit. Perlakuan disusun dalam rancangan perlakuan tunggaltidak terstruktur dengan 6 perlakuan dan 4 ulangan, sehingga terdapat 24 satuan percobaan.  Perlakuan yang digunakan yaitu P0 (Kontrol), P1 ( Glomus sp. isolat MV 10), P2 ( Glomus sp. isolat MV 27), P3 ( Gigaspora sp. isolat MV 17), P4 ( Entrophospora sp. isolat MV 2), P5 ( Entrophospora sp. isolat MV 29).  Rancangan percobaan yang digunakan adalah Rancangan Acak Kelompok. Kesamaan ragam antar perlakuan diuji dengan Uji Barlett.  Kemenambahan data diuji dengan Uji Tukey.  Jika asumsi terpenuhi yaitu ragam perlakuan homogen dan data bersifat menambah, data dianalisis ragam.  Pengujian beda nilai tengah antar perlakuan dilakukan dengan uji Beda Nyata Terkecil (BNT) pada selang kepercayaan Q 5%.  Hasil penelitian menunjukkan bahwa FMA jenis Entrophospora sp. isolat MV 29 dan Glomus sp. isolat MV 27 merupakan FMA yang terbaik untuk pertumbuhan bibit kelapa sawit dibandingkan dengan FMA lainnya dan tanpa FMA yang dilihat melalui nilai tengah jumlah daun sebesar 10,5 helai, nilai tengah bobot kering tajuk sebesar 30,7 g dan  29,2 g, nilai tengah diameter batang sebesar 3,98 cm dan 4,02 cm dan nilai tengah persen infeksi akar sebesar 82,9% dan 75,8%.
Kata kunci: Bibit Kelapa Sawit, FMA, Pembibitan, Seleksi.

## PENDAHULUAN
Kelapa  sawit  ( Elaeis  guineensis Jacq.) merupakan  salah  satu  tanaman  perkebunan  yang mempunyai  nilai  ekonomi  yang  tinggi.    Indonesia merupakan salah satu produsen utama minyak kelapa sawit  di  dunia.    Pengembangan  kelapa  sawit  telah dilakukan  secara  luas  di  Indonesia  sehingga  perlu difikirkan  usaha  untuk  meningkatkan  kualitas  dan kuantitas produksi kelapa sawit secara tepat.  Salah satu  aspek  agronomis  yang  tidak  terlepas  dalam pengembangan  kelapa  sawit  yaitu  pembibitan. Menurut Atkinson  (2000),  salah  satu  cara  untuk meningkatkan pertumbuhan bibit yaitu dengan cara meningkatkan kemampuan bibit dalam mengambil air dan  unsur  hara  dari  dalam  tanah  yang  merupakan peranan dari akar.
Fungi Mikoriza Arbuskular (FMA) merupakan simbion  obligat  yang  hidup  secara  simbiosis mutualisme dengan perakaran tanaman dan tumbuh diantara sel-sel korteks akar. FMA memiliki kemampuan bersimbiosis hampir dengan 90% tanaman (Smith dan Read, 2008).  Kelapa sawit adalah tanaman yang secara
alami dapat  bersimbiosis  dengan  FMA  (Rini et  al. , 2010). Keberadaan FMA dapat meningkatkan efisiensi penyerapan  unsur  hara  terutama  fosfor  yang ketersediaannya sangat rendah  (Prayudianingsih  dan Sari, 2016).
Iskandar  (2002)  menyatakan  bahwa  prinsip kerja FMA adalah menginfeksi sistem perakaran dari tanaman  inang,  memproduksi  jalinan  hifa  secara intensif sehingga tanaman yang bersimbiosis dengan mikoriza  tersebut  akan  mampu  meningkatkan kapasitasnya  dalam  penyerapan  unsur  hara. Keuntungan  dari  keberadaan  FMA  selain  dapat meningkatkan serapan fosfat dan unsur hara lainnya juga  dapat  menyerap  ion-ion  esensial  yang  secara normal berdifusi secara lambat ke permukaan akar, tetapi dibutuhkan dalam jumlah besar oleh tanaman seperti  amunium,  kalium,  dan  nitrat.    Manfaat mikoriza ini akan secara nyata terlihat jika kondisi tanahnya miskin hara atau kering, sedangkan pada kondisi tanah yang subur, peran mikoriza ini tidak terlalu terlihat (Lakitan, 2012).
Fungi Mikoriza Arbuskular tidak hanya hidup pada satu jenis tanaman, begitu juga tanaman dapat
bersimbiosis dengan banyak jenis FMA.  Pemilihan jenis FMA yang tepat untuk pertumbuhan kelapa sawit diharapkan  dapat  meningkatkan  pertumbuhan  bibit kelapa sawit yang berkualitas sehingga pada akhirnya bibit tersebut mampu tumbuh dengan baik di lapangan. Penelitian ini bertujuan untuk menentukan isolat FMA yang terbaik untuk pembibitan kelapa sawit.

## BAHAN DAN METODE
Perlakuan disusun dalam rancangan perlakuan tunggal tidak terstruktur dengan 6 perlakuan dan 4 ulangan,  sehingga  terdapat  24  satuan  percobaan. Perlakuan  yang  digunakan  yaitu  P0  (Kontrol),  P1 ( Glomus sp.  isolat MV  10),  P2  ( Glomus sp.  isolat MV  27),  P3  ( Gigaspora sp.  isolat  MV  17),  P4 ( Entrophospora sp. isolat MV 2), P5 ( Entrophospora sp. isolat MV 29).  Deskripsi masing-masing FMA disajikan pada Tabel 1.  Rancangan percobaan yang digunakan  adalah  Rancangan Acak  Kelompok. Pengelompokan berdasarkan tinggi bibit dan panjang akar.  Kesamaan ragam antar perlakuan diuji dengan Uji Barlett.  Kemenambahan data diuji dengan Uji Tukey.  Jika asumsi terpenuhi yaitu ragam perlakuan homogen  dan  data  bersifat  menambah,  maka  data dianalisis ragam.  Pengujian beda nilai tengah antar perlakuan dilakukan dengan uji Beda Nyata Terkecil (BNT) pada taraf selang kepercayaan Q 5%.
Penyemaian benih dan penyiapan media tanam di Pre nursery. Media tanam yang digunakan untuk penyemaian dan pre nursery yaitu pasir sungai yang telah disterilkan menggunakan autoclave dengan suhu 121 0 Cselama ± 1 jam.  Kemudian pasir dicuci bersih hingga 6 kali. Setelah itu pasir untuk penyemaian di masukkan ke dalam bak semai.  Benih kelapa sawit yang  baru  berkecambah  disemai  pada  media persemaian. Bibit dipelihara di persemaian selama 4 minggu.    Sedangkan  untuk  media  tanam  di pre nursery, pasir  dimasukkan  ke  dalam  polybag berukuran 18 x 25 cm.
Persiapan  inokulan. Ada  2  cara  persiapan inokulan, yaitu inokulan yang diisolasi terlebih dahulu, dan inokulan tanpa diisolasi.  Inokulan yang diisolasi terlebih dahulu yaitu Glomus sp. isolat MV 10, Glomus sp. isolat MV 27, Gigaspora sp. isolat MV 17 dan
Entrosphospora sp.  isolat  MV  2.    Cara  isolasi menggunakan teknik penyaringan basah (Brundrett et al. , 1996), lalu diamati di bawah mikroskop stereo. Spora  FMA  yang  akan  digunakan  diambil menggunakan pinset spora lalu dikumpulkan di dalam cawan  arloji,  kemudian  dihitung  menggunakan counter.  Prosedur ini dilakukan sampai didapatkan 500 spora. Sedangkan untuk inokulan Entrosphospora sp.    isolat  MV  29  tidak  diisolasi.    Pada  inokulan Entrophospora sp. isolat MV 29  terdapat 961 spora / 50g.  Sehingga diperlukan 26,01 g inokulum untuk menyediakan  500  spora  per  bibit  kelapa  sawit. Penimbangan  dilakukan  dengan  menggunakan timbangan elektrik.
Penanaman  di pre  nursery dan  inokulasi spora  FMA .  Benih  yang  telah  disemai  selama  4 minggu,  dipindah  tanam  ke  dalam  polybag  yang berukuran 18 x 25 cm dengan satu bibit per polybag. Spora dari masing-masing isolat Glomus sp.   isolat MV  10, Glomus sp.  isolat  MV  27, Gigaspora sp. isolat MV 17 dan Entrosphospora sp. isolat MV 2 diambil  dengan  menggunakan  mikropipet  lalu disemprotkan secara merata ke seluruh permukaan akar.  Inokulum Entrophospora sp. isolat MV 29 yang telah  ditimbang,  ditaburkan  secara  merata  dan perlahan pada akar-akar bibit hingga inokulum tersebar merata di permukaan akar.  Kemudian bibit kelapa sawit  yang  berada  dalam  lubang  tanam  dan  telah diaplikasi  FMA  ditutup  dengan  media  tanam. Selanjutnya bibit disusun di dalam rumah kaca sesuai tata letak percobaan.  Bibit dipelihara di pre nursery selama 3 bulan.
Penyiapan  media  tanam  di main  nursery . Media tanam yang digunakan pada main nursery yaitu tanah top soil.  Sebelum digunakan, tanah dianalisis untuk mengecek spora indigenous sebanyak 3 kali ulangan.  Tanah diayak terlebih dahulu menggunakan ayakan tanah, lalu dimasukkan ke dalam polybag yang berukuran 30 cm x 40 cm.
Penanaman  di main  nursery. Bibit  kelapa sawit  yang  telah  berumur  3  bulan  di pre  nursery ditransplanting ke main nursery secara hati-hati agar akar  tidak  rusak  atau  patah.    Bibit  yang  telah ditransplanting disusun sesuai tata letak percobaan. Bibit dipelihara di main nursery selama 3 bulan.
Spesies Isolat Asal Daerah Tanaman Inang Glomus sp. MV 10 Gunung Para, Sumatra Utara Kelapa Sawit Glomus sp. MV 27 Sekampung Udik, Lampung Kelapa Sawit Gigaspora sp. MV 17 Jember, Jawa Timur Jarak Entrophospora sp. MV 2 Sekampung Udik, Lampung Kelapa Sawit Entrophospora sp. MV 29 Bentar Kersik B, Sumatra Utara Kelapa Sawit
Tabel 1.  Deskripsi 5 isolat yang diuji
Pemeliharaan  tanaman  dan  pengamatan. Pemeliharaan  bibit  kelapa  sawit  yang  dilakukan meliputi penyiraman, penyiangan gulma, pengendalian hama dan penyakit, serta pemupukan.  Penyiraman dilakukan satu hari sekali.  Penyiangan gulma secara manual  dengan  cara  dicabut  gulma-gulma  yang tumbuh  disekitar  bibit  kelapa  sawit  dengan menggunakan tangan. Pengendalian hama dilakukan dengan cara manual dengan membersihkan hama yang ada  di  sekitar  tanaman.    Pengendalian  penyakit dilakukan dengan cara kimiawi yaitu mengusapkan alkohol 10% ke permukaan tanaman yang terserang. Pemupukan dilakukan dengan menggunakan pupuk urea pada saat bibit berumur 3-8 minggu dengan dosis 2  g/L  air/  100  tanaman  setiap  satu  miggu  sekali. Kemudian dilanjutkan dengan pupuk NPK (15:15:6,4) pada saat bibit berumur 10 minggu dengan dosis 10 g/ 5 L air/ 100 tanaman, pada saat bibit berumur 12- 24  minggu  dengan  dosis  7  g/tanaman  setiap  dua minggu sekali, dan pada saat bibit berumur 26 minggu dengan dosis 15 g/tanaman setiap satu minggu sekali.
Pada akhir penelitian (3 bulan di main nursery ) dilakukan pengamatan terhadap variabel persen infeksi akar (%) dengan rumus:
Persen infeksi
jumlah daun (helai) yang dihitung pada daun yang terbuka sempurna, diameter batang (cm) yang diukur pada batang terbesar (bonggol) menggunakan jangka sorong, dan bobot kering tajuk (g) dan bobot kering akar  (g)  yang  ditimbang  menggunakan  timbangan elektrik setelah dikeringkan di dalam oven sampai bobotnya konstan.

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Hasil penelitian menunjukkan bahwa pemberian FMA  berpengaruh  nyata  pada  persen  infeksi  akar. Semua jenis FMA yang diinokulasikan pada tanaman

## = 𝛴 𝑝𝑒𝑛𝑔𝑎𝑚𝑎𝑡𝑎𝑛  𝑦𝑎𝑛𝑔  𝑝𝑜𝑠𝑖𝑡𝑖𝑓  𝑡𝑒𝑟𝑖𝑛𝑓𝑒𝑘𝑠𝑖
𝛴 𝑡𝑜𝑡𝑎𝑙  𝑝𝑒𝑛𝑔𝑎𝑚𝑎𝑡𝑎𝑛 𝑥 100%
bibit kelapa sawit memiliki persen infeksi akar yang lebih baik dibandingkan dengan tanpa FMA.  Persen infeksi akar tertinggi diperoleh pada bibit kelapa sawit yang diinokulasi dengan FMA jenis Entrophospora sp.  isolat  MV  29  yaitu  sebesar  82,9%  dan  tidak berbeda nyata dengan inokulasi FMA lainnya.  Persen infeksi akar terendah diperoleh pada bibit kelapa sawit tanpa FMA yaitu sebesar 51,4% (Tabel 2).  Adanya infeksi akar bibit kelapa sawit tanpa FMA ini karena adanya FMA indigenous dalam media tanah ( main nursery )  yang  tidak  disterilisasi  terlebih  dahulu sehingga menginfeksi akar bibit kelapa sawit.  Setelah dilakukan perhitungan spora indigenous, terdapat 18 spora indigenous/ 50 g tanah yang digunakan.  Pada penelitian ini menggunakan media tanah sebanyak 8 kg/  polybag,  sehingga  populasi  spora  indigenous sebanyak  2880  spora/  polybag.    Banyaknya  spora indigenous yang berada di dalam tanah menyebabkan akar tanaman kontrol terinfeksi oleh FMA.
Persen  infeksi  akar  dipengaruhi  oleh  faktor kesesuaian FMA dengan tanaman inang.  Kesesuaian tersebut dilihat dari eksudat akar yang dikeluarkan oleh akar tanaman inang.  Diduga semua jenis FMA yang diinokulasikan baik Glomus sp., Gigaspora sp., dan Entrophospora sp., cocok dengan eksudat akar bibit kelapa sawit.  Hal ini juga sama dengan hasil penelitian Hadi (2011) bahwa semua jenis FMA yang diaplikasikan baik Glomus sp., Gigaspora sp., dan Entrophospora sp., memiliki persen infeksi akar yang lebih tinggi dibandingkan dengan tanpa FMA pada bibit kelapa sawit.
Menurut Allen  (2001),  keterpaduan  antara inang dengan FMA dapat dilihat dengan derajat infeksi akar  inangnya,  meskipun  belum  tentu menggambarkan  tinggi  rendahnya  pertumbuhan tanaman  inang.    Pengamatan  persen  infeksi  akar dilakukan untuk melihat ada atau tidaknya struktur FMA (hifa internal, arbuskul, dan vesikel) yang berada di dalam akar.  Tingginya persen infeksi akar tidak selalu mencerminkan tingginya hifa eksternal yang terbentuk.  Sedangkan dalam penyerapan unsur hara dipengaruhi oleh kolonisasi hifa eksternal.  Tingginya

## Tabel 2. Data persen infeksi akar bibit kelapa sawit umur 28 MST yang telah diinokulasi 5 jenis FMA
Perlakuan Nilai tengah persen infeksi akar ---------------%--------------- Tanpa Mikoriza 51,4  b Glomus sp. Isolat MV 10 66,6  ab Glomus sp. Isolat MV 27 75,8  a Gigaspora sp. Isolat MV 17 73,0  a Entrophospora sp. Isolat MV 2 67,1  ab Entrophospora sp. Isolat MV 29 82,9  a BNT 5% 17,684
Keterangan:  Dua nilai tengah yang diikuti dengan huruf yang sama tidak berbeda menurut uji BNT pada selang kepercayaan 5%. α
persen infeksi akar pada perlakuan FMA jenis Glomus sp. isolat  MV  10, Gigaspora sp.  isolat  MV  17,  dan Entrophospora sp. isolat MV 2 tidak diikuti dengan meningkatnya pertumbuhan tanaman.  Diperkirakan bahwa hifa eksternal yang terbentuk pada perlakuan Glomus sp. isolat MV 10, Gigaspora sp. isolat MV 17  dan Entrophospora sp.  isolat  MV  2  rendah, sehingga kemampuan FMA dalam menyerap unsur hara dan air rendah dan  belum dapat meningkatkan pertumbuhan tanaman.  Hifa eksternal FMA pada akar tanaman dapat memperluas bidang serapan akar yang tumbuh dan berkembang melalui bulu akar (Talanca, 2010).  Berbeda dengan perlakuan FMA jenis Glomus sp. isolat MV 27 dan Entrophospora sp. isolat MV 29 yang memiliki persen infeksi akar yang tinggi dan pertumbuhan  tanamannya  juga  meningkat. Diperkirakan bahwa  hifa eksternal  yang  terbentuk pada  perlakuan Glomus sp.  isolat  MV  27  dan Entrophospora sp. isolat MV 29 juga tinggi, sehingga unsur hara yang diserap juga tinggi.  Hal ini dapat dilihat  berdasarkan jumlah  daun,  diameter  batang, bobot  kering  akar  dan  bobot  kering  tajuk  yang meningkat.    Jumlah  daun  dan  diameter  batang tertinggi  diperoleh  pada  bibit  kelapa  sawit  yang
diinokulasikan FMA jenis Glomus sp. isolat MV 27 tidak berbeda nyata dengan Entrophospora sp. isolat MV 29 (Tabel 3).  Hal ini dapat terjadi karena unsur hara yang diserap oleh FMA akan digunakan oleh tanaman dalam proses pembelahan sel.  Pembelahan sel pada area pucuk  akan  membentuk  daun  baru,  sehingga  akan meningkatkan jumlah daun (Sari et al ., 2016).
Dengan  meningkatnya  jumlah  daun  maka proses fotosintesis semakin meningkat sehingga lebih banyak  fotosintat  yang  dihasilkan  dari  proses fotosintesis tanaman.  Fotosintat tersebut diedarkan ke  seluruh  bagian  tanaman  termasuk  batang. Menurut  Cavagnaro et  al .  (2003),  efektivitas simbiosis FMA dapat dilihat berdasarkan kemampuan FMA  dalam  meningkatkan  bobot  kering  tanaman. Bobot kering tajuk tanaman tertinggi diperoleh pada bibit  kelapa  sawit  yang  diinokulasikan  FMA  jenis Entrophospora sp. isolat MV 29 yang tidak berbeda nyata  dengan Glomus sp.  isolat  MV  27  (Tabel  4). Unsur hara dan air yang diserap oleh FMA digunakan tanaman  dalam  membantu  proses  metabolisme tanaman.  Produk dari seluruh metabolisme tanaman adalah  bobot  kering  tanaman.    Menurut  Musfal (2010),  bobot  kering  tanaman  mencerminkan

## Tabel 3. Data jumlah daun dan diameter batang bibit kelapa sawit umur 28 MST yang telah diinokulasi 5 jenis FMA
Tabel 4. Data bobot kering tajuk dan bobot kering akar bibit kelapa sawit umur 28 MST yang telah diinokulasi 5 jenis FMA
Perlakuan Nilai tengah jumlah daun Nilai tengah diameter batang ------------helai----------- ----------------cm---------------- Tanpa Mikoriza 9,3  b 3,32  b Glomus sp. Isolat MV 10 8,8  b 3,16  b Glomus sp. Isolat MV 27 10,5  a 4,02  a Gigaspora sp. Isolat MV 17 8,8  b 3,29  b Entrophospora sp. Isolat MV 2 9,3  b 3,39  b Entrophospora sp. Isolat MV 29 10,5  a 3,98  a BNT 5% 1,1 0,59 Keterangan:  Dua nilai tengah yang diikuti dengan huruf yang sama tidak berbeda menurut uji BNT pada selang kepercayaan 5%. Perlakuan Nilai tengah bobot kering tajuk Nilai tengah bobot kering akar ---------------g--------------- Tanpa Mikoriza 20,3   bc 6,5   ab Glomus sp. Isolat MV 10 19,2   c 5,2  b Glomus sp. Isolat MV 27 29,2  ab 7,4   ab Gigaspora sp. Isolat MV 17 20,0   bc 5,9  ab Entrophospora sp. Isolat MV 2 20,3  bc 5,8   ab Entrophospora sp. Isolat MV 29 30,7   a 8,3   a BNT 5% 9,9 2,9
Keterangan:  Dua nilai tengah yang diikuti dengan huruf yang sama tidak berbeda menurut uji BNT pada selang kepercayaan 5%.
α
α
banyaknya unsur  hara  yang  diserap  oleh  tanaman. Semakin berat bobot kering tanaman, pertumbuhan tanaman  akan  semakin  baik  dan  unsur  hara  yang diserap tanaman juga semakin banyak.
Pertumbuhan  tanaman  kontrol  lebih  baik dibandingkan dengan tanaman yang diberi FMA jenis Glomus sp. isolat MV 10, Gigaspora sp. isolat MV 17, dan Entrophospora sp. isolat MV 2 pada beberapa variabel (Gambar 1, Tabel 3, dan Tabel 4).  Hal ini diduga  karena  spora  indigenous  yang  menginfeksi tanaman kontrol lebih efektif dalam meningkatkan pertumbuhan bibit kelapa sawit, sehingga bibit kelapa sawit  tanpa  FMA  pertumbuhannya  lebih  baik dibandingkan dengan FMA jenis Glomus sp. isolat MV  10, Gigaspora sp.  isolat  MV  17,  dan Entrophospora sp. isolat MV 2.  Menurut Suhardi (1988),  FMA  indigenous  lebih  efesien  dalam meningkatkan pertumbuhan tanaman karena sudah beradaptasi dengan lingkungan sekitar dibandingkan dengan FMA yang baru diinokulasikan.  Susila et al . (2016)  menyatakan  bahwa  penggunaan  mikoriza indigenous pada tanaman padi lebih adaptif dan efektif dalam  perkembangannya,  sehingga  kemampuan dalam menyerap unsur hara dan air semakin tinggi dan dapat meningkatkan kecepatan pertumbuhan tanaman.
Pada penelitian ini diduga seluruh perlakuan selain  terinfeksi  FMA  yang  diinokulasikan  juga terinfeksi oleh spora indigenous.  Hal ini dibuktikan dengan ditemukannya vesikel pada akar bibit kelapa sawit  yang  diinokulasi  FMA  jenis Gigaspora sp. Isolat  MV  17  (Gambar 2).  FMA  jenis Gigaspora seharusnya  tidak  membentuk  vesikel.    Menurut Brundrett (2008), genus Gigaspora dan Scutellospora tidak membentuk vesikel.  Genus ini menghasilkan organ  yang  membengkak  dan  berkerumun  dengan duri-duri  pada  hifa  eksternal  yang  disebut  dengan auxilary cell .  Vesikel yang terdapat pada akar tersebut diduga  berasal  dari  spora  indigenous  yang menginfeksi akar bibit kelapa sawit.
Dengan  adanya  FMA  indigenous  yang menginfeksi  akar  bibit  kelapa  sawit,  maka  terjadi persaingan  antara  FMA  indigenous  dan  FMA eksogenus  (FMA  yang  diaplikasikan).  FMA  jenis Gigaspora sp. isolat MV 17, Glomus sp. isolat MV 10, dan Entrophospora sp. isolat MV 2 diduga tidak mampu bersaing dengan FMA indigenous yang ada. Hal ini terlihat dari pertumbuhan tanaman yang kurang optimal.  Namun berbeda dengan yang terjadi pada FMA  jenis Glomus sp.  isolat  MV  27  dan Entrophospora sp. isolat MV 29 yang tetap meningkat
Gambar 1.  Bibit kelapa sawit yang diberi perlakuan P0 (kontrol), P1 ( Glomus sp. Isolat MV 10), P2 ( Glomus sp. isolat MV 27), P3 ( Gigaspora sp. isolat MV 17), P4 ( Entrophospora sp. isolat MV 2), P5 ( Entrophospora sp. isolat MV 29).
pertumbuhannya, hal ini diduga karena FMA jenis Glomus sp. isolat MV 27 dan Entrophospora sp. isolat MV  29  mampu  bersaing  dengan  FMA  indigenous yang ada sehingga dapat meningkatkan pertumbuhan tanaman.  Menurut Novriani dan Madjid (2009), salah satu  indikator  FMA  dapat  dikatakan  efisien penggunaanya  apabila  mampu  bersaing  dengan mikroorganisme  lain  untuk  menginfeksi  dan mengabsorbsi nutrisi ke akar tanaman dan mampu mentransfer nutrisi tersebut ke tanaman.

## KESIMPULAN
FMA jenis Entrophospora sp. isolat MV 29 dan Glomus sp. isolat MV 27 merupakan FMA yang terbaik  untuk  pertumbuhan  bibit  kelapa  sawit dibandingkan dengan FMA lainnya dan tanpa FMA yang dilihat melalui nilai tengah jumlah daun sebesar 10,5  helai, nilai tengah bobot  kering tajuk sebesar 30,7  g  dan    29,2  g,  nilai  tengah  diameter  batang sebesar 3,98 cm dan 4,02 cm dan nilai tengah persen infeksi akar sebesar 82,9% dan 75,8%.

## DAFTAR PUSTAKA
Allen, M. F.  2001.  Modeling Arbuscular Mycorrhizal Infection:  is  %  Infection  an  Appropriate Variable. Mycorrhiza J .  10 : 255-258.
Atkinson, D.  2000. Root characteristics: Why and What  to measure.  In A.   L.  Smit etal  (eds) Root  methonds  A  Handbook .    Heidelberg, Springer, Verlag.  32 hlm.
Brundrett,  M.  N.    Bougher,  B.    Dell.    Gove  dan Malajczuk,  N.    1996. Working  with
Mycorhizas  in  Forestry  and  Agriculture .
Australia Center for International Agricultural Research (ACIAR).  Camberra.  374 hlm.
Brundrett, M. C.  2008.  Mycorrhizal Association: The Web Resource.  https://mycorrhizas.  info/ vam.html.   Diakses pada 3 April 2017.
Cavagnaro, T.  R.,  Smith, F. A., Ayling, S. M., Smith, S. E.  2003.  Growth and Phosphorus Nutrition of  A  Paris-type  Arbuscular  Mycorrhizal Symbiosis. New Phytol. 157:85-89.
Hadi, A. M.  2011. Pengaruh Pemberian Glomus sp., Gigaspora sp., Entrophospora sp., dan Dua Dosis NPK pada Pertumbuhan Bibit Kelapa Sawit (Elaeis guineensis Jacq.) di Pembibitan . Skripsi  Fakultas  Pertanian  Universitas Lampung.  Bandar Lampung.  65 hlm.
Iskandar, D.  2002. Pupuk Hayati Mikoriza untuk Pertumbuhan dan Adapsi Tanaman di Lahan Marginal .  PPKS RISPA.  Medan.  58hlm.
Lakitan, B.  2012. Dasar-dasar Fisiologi Tumbuhan .
Rajawali Pers.  Jakarta.  206 hlm
Musfal.  2010.  Potensi Cendawan Mikoriza Arbuskula untuk  Meningkatkan  Hasil Tanaman  Jagung. Jurnal Litbang Pertanian .  29 (4): 154-158.
Novriani  dan  Majid.    2009.    Peran  dan  Prospek Mikoriza.  Universitas Sriwijaya: Palembang. http://www.scribd.com/doc/22391846/Peran- Dan-Prospek-Mikoriza.    Diakses  pada  12 Maret 2016.
Prayudianingsih, R. dan Sari, R.  2016.  Aplikasi Fungi Mikoriza Arbuskula (FMA) dan Kompos untuk Meningkatkan  Pertumbuhan  Semai  Jati ( Tectona grandis Linn.f.) pada Media Tanah Bekas  Tambang  Kapur. Jurnal  Penelitian Kehutanan Wallacea .  5(1): 37-46.
Rini, M. V.  Utoyo, B., dan Timotiwu, P. B.  2010. Populasi Keragaman Fungi Mikoriza Arbuskular pada  Perkebunan  Kelapa  Sawit  di  Tanah Mineral  dan  Gambut .    Prosiding  Seminar Nasional  Keragaman  Hayati  Tanah  H-1. Bandar Lampung.  29-30 Juni 2010.  208-218.
Sari,  A.,  Noli,  Z.  A.,  dan  Suwirmen.    2016. Pertumbuhan  Bibit  Surian  (Toona  sinensis (Juss,) M. Roem) yang Diinokulasi Mikoriza pada  Media  Tanam  Tanah  Ultisol. Al- Kauniyah Jurnal Biologi. 9 (1):1-9.
Smith, S. E.,  dan Read, D. J.   2008. Mycorrhizal Symbiosis. Academic Press. London. 800 hlm.
Suhardi.    1988. Cendawan  Mikoriza  Vesikular Arbuskular .    Pedoman  Kuliah.    PAU- Bioteknologi  Universitas  Gadjah  Mada. Yogyakarta.  178 hlm.
Susila, E., Elita, N., dan Yefriati.  2016.  Uji Isolat FMA Indigenous terhadap Pertumbuhan dan Infeksi Akar  Tanaman  Padi  Metode  SRI. Jurnal Pros Sem Nas Masy Biodiv Indon .  2 (1):  71-75.
Talanca,  H.    2010.    Status  Cendawan  Mikoriza Vesikular-Arbuskular (MVA) pada Tanaman. Prosiding Pekan Serealia Naional .  Sulawesi Selatan.  353-357.