PENGENDALIAN PENYAKIT ANTRAKNOSA PADA BUAH PEPAYA MELALUI COATING METABOLIT SEKUNDER TRICHODERMA SP. ( Controlling The Anthracnose On Papaya Fruits By The Coating Treatment Using Secondary Metabolites Trichoderma sp . )
Mulyani, R. B.* 1) , Asie, E. R. 1) dan Aruan, C. C. 1)
Program Studi Agroteknologi, Jurusan Budidaya Pertanian, Fakultas Pertanian,
Universitas Palangka Raya
*E-mail: rahmawati.mulyani@agr.upr.ac.id Diterima :  12/08/2021 Disetujui : 17/08/2021

## ABSTRACT
The  purpose  of  this  study  was  to  determine  the  effect  of  secondary  metabolites Trichoderma longibrachiatum and Trichoderma viride to control anthracnose ( Colletotrichum gloeosporioides ) on postharvest papaya fruit. Phase I, in vitro experiment was performed with the variables as follows, M0 treatment:  without  secondary  metabolites;  M2:  secondary  metabolites  of Trichoderma longibrachiatum ;  M3:  secondary  metabolites  of Trichoderma  viride .  Phase  II,  in  vivo  testing  was carried  out  on  secondary  metabolites  with  the  best  inhibition  results  during  the  Phase  I,  i.e.  MT0: without secondary metabolites and without pathogens; MT1 : without secondary metabolites and was added with the pathogen; and MT2: secondary metabolites Trichoderma sp. and the pathogens. The in vitro test results showed that the secondary metabolites T. longibrachiatum produced the best zone of inhibition at 30.47 mm which was categorized as very strong. Secondary metabolites might affect the morphology of pathogenic hyphae such as twisted, lysis, shrinking or shrinking and swelling. In the in vivo test, there was no difference in the incubation period of the pathogen in all treatments, such as the early signs were observed on the 5 th day.  The lowest diameter of fruit damage was 1.93 mm in the secondary metabolites treatment of T. longibrachiatum (MT2) with only a 16.66% of disease severity compared to the group samples without secondary metabolites (MT1), which had the highest disease severity of 51.6%. C oating with secondary metabolites  of T. longibrachiatum was able to extend the shelf life of papaya fruit to 8.33 days compared to the control only 6.73 days.
Keyword : Anthracnose disease, Coating, Secondary metabolites, Trichoderma sp.

## ABSTRAK
Tujuan  penelitian  ini  adalah  untuk  mengetahui  pengaruh  metabolit  sekunder Trichoderma longibrachiatum dan Trichoderma  viride mengendalikan  penyakit  antraknosa  ( Colletotrichum gloeosporioides ) pada buah pepaya pascapanen.  Pengujian tahap I secara in vitro dengan perlakuan M0  :  tanpa  metabolit  sekunder;  M2  :  metabolit  sekunder Trichoderma  longibrachiatum dan  M3  : metabolit sekunder Trichoderma viride. Pengujian Tahap II secara in vivo dilakukan pada metabolit sekunder dengan penghambatan terbaik hasil uji pada Tahap I yaitu MT0 : tanpa metabolit sekunder dan tanpa patogen;  MT1 : tanpa metabolit sekunder diberi  patogen; dan  MT2 : metabolit sekunder T.  longibrachiatum dan  patogen.  Hasil  uji in  vitro menunjukkan  bahwa  metabolit  sekunder T. longibrachiatum menghasilkan    zona  hambat  terbaik  sebesar  30,47  mm  dikategorikan  sangat  kuat. Metabolit  sekunder  berpengaruh  terhadap  morfologi  hifa  patogen  seperti  terpelintir,  lisis,  menyusut atau mengecil dan mengalami pembengkakan. Tidak terdapat perbedaan masa inkubasi patogen pada semua perlakuan yaitu gejala awal nampak pada hari ke 5. Diameter kerusakan buah terendah sebesar 1,93  mm  pada  perlakuan  metabolit  sekunder T.longibrachiatum (MT2)  dengan  keparahan  penyakit hanya  16,66  %  dibandingkan  dengan  perlakuan  tanpa  metabolit  sekunder  (MT1)  sebesar  51,6  %. Pelapisan  buah  ( coating )  dengan  metabolit  sekunder T.  longibrachiatum mampu  memperpanjang umur  simpan buah pepaya menjadi 8,33 hari dibandingkan dengan kontrol hanya 6,73 hari.
Kata kunci : Antraknosa, Coating , Metabolit Sekunder, Trichoderma sp.

## PENDAHULUAN
Pepaya  merupakan  salah  satu  tanaman hortikultura  yang  banyak  di  budidayakan  di Indonesia.  Produksi  buah  pepaya  di  Indonesia setiap  tahunnya  mengalami  peningkatan. Berdasarkan data BPS (2019) produksi pepaya di  Indonesia  fluktuatif  dari  tahun  2015  hingga 2017  pada  tahun  2015  mencapai  851,532  ton, pada  tahun  2016  mengalami  peningkatan hingga  904,284  ton,  namun  pada  tahun  2017 mengalami  penurunan  menjadi  878,108  ton. Penurunan  produksi  pepaya  disebabkan  oleh kurangnya  penggunaan  varietas  unggul  dan teknologi  pengembangan  budidaya  pepaya yang  sesuai  dengan  standar.  Selain  karena faktor  cuaca,  sebagian  petani  kurang memerhatikan  aspek  sanitasi  dalam  perawatan tanaman  terutama  mengenai  kebersihan  lahan. Hal  ini  ikut  menjadi  faktor  pendukung  dalam meningkatnya kehilangan hasil karena serangan Organisme  Pengganggu  Tumbuhan  (OPT)  dan gangguan  unsur  hara,  sehingga  menyebabkan pepaya tidak berproduksi bahkan menjadi gagal panen.
Salah satu OPT utama yang menyebabkan kehilangan  hasil  pada  tanaman  pepaya  adalah penyakit  antraknosa  yang  disebabkan  jamur patogen Colletotrichum  gloesporiodes (Penz) Sacc.  (Phyllachorales  :  Phyllachoraceae). Kerugian  yang  disebabkan  oleh  penyakit antraknosa dapat mencapai 100%, karena buah berguguran  dan  pada  varietas  yang  rentan menyebabkan  mati  pucuk  ( die  back )  (Wiyono, 2008). Pada umumnya antraknosa pada pepaya lebih  dikenal  sebagai  penyakit  pascapanen, akan  tetapi  Haggag  dan  Singer  (2013) melaporkan C.  capsici dapat  menyebabkan antraknosa  sebelum  dan  sesudah  pascapanen. Pengamatan  di  lapangan  pada  daerah Agrowisata  Misik,  Kelurahan  Kalampangan, Kota  Palangka  Raya  serangan  penyakit antraknosa  pada  tanaman  pepaya  mencapai 61,11%  (Komunikasi  Pribadi,  Wario,  01  Mei 2019).  Penyakit  ini umumnya  dikendalikan dengan  menggunakan  fungisida  sintetik, namun,  penggunaan  fungisida  sintetik  secara intensif  dapat  menimbulkan  dampak  negatif berupa  resistensi  dan  juga  residu  pada pertanaman  maupun  hasil  panen.  Oleh  karena itu,  diperlukan  pengendalian  hayati  yang  lebih ramah  lingkungan.  Pengolahan  pascapanen sekaligus  pengendalian  alternatif  yang  dapat dilakukan  adalah coating atau  pelapisan  pada
produk  buah  dan  sayuran  pascapanen  (El- Ramady et al., 2015).
Perkembangan  penyakit  antraknosa  dapat dihambat  dengan  menggunakan  bahan  pelapis ( coating) yang  bertujuan  untuk  menghambat pelepasan  gas,  uap  air  dan  kontak  dengan oksigen  dapat  memperlambat  pemasakan  buah (Hamdayanty,  2012),  dan  juga  dapat memperpanjang masa simpan produk pascapanen  karena  dapat  melindungi  produk dari kerusakan mekanis, biologis dan mencegah kehilangan  senyawa-senyawa  volatil  (Raghav et al ., 2016).
Metabolit  sekunder  adalah  hasil  dari metabolisme mikroba yang dieksresikan keluar selnya  karena  tidak  ada  manfaatnya  bagi kehidupan  mikroba  tersebut. Trichoderma longibraciatum merupakan  agen  hayati  yang potensial  dikembangkan  karena  memiliki  daya hambat  yang  konsisten.  Penelitian  Gustiara (2017) menunjukkan bahwa T. longibrachiatum mampu  menghambat  pertumbuhan  patogen Fusarium  oxysporum f.sp. cubense sebesar 60%  secara  in  vitro. Trichoderma  viride dapat meningkatkan  ketahanan  tanamana  cabai terhadap  penyakit  antraknosa,  meningkatkan tinggi tanaman, dan meningkatkan jumlah buah pada  varietas  Ferosa  dan  Laris  (Wulandari, 2014).
Penelitian  ini  bertujuan  untuk  untuk mengetahui  pengaruh  metabolit  sekunder T.longibrachiatum dan T. viride mengendalikan penyakit  antraknosa    pada  buah  pepaya pascapanen.

## BAHAN DAN METODE
Lokasi  penelitian  di  Laboratorium Jurusan Budidaya Pertanian, Fakultas Pertanian,  Universitas  Palangka  Raya  dimulai bulan  Juli  hingga  Oktober  2019.  Patogen C. gloeosporioides diisolasi  dari  buah  pepaya yang bergejala antraknosa, kemudian dilakukan kulturisasi  dan  pemurnian  pada  media Potato Dextrose  Agar (PDA)  selama  7  hari.  Isolat agens  hayati T.  longibrachiatum (Koleksi Laboratorium Jurusan Budidaya Pertanian) dan Trichoderma  viride (Koleksi  laboratorium BPTPH  Kalimantan  Selatan)  diremajakan kembali  pada  media  PDA.    Penelitian menggunakan  rancangan  acak  lengkap  (RAL) dan  diulang  sebanyak  empat  kali.  Tahap pertama  adalah  pengujian  secara in  vitro dengan  perlakuan  M0  :  Tanpa  metabolit
sekunder;  M1  :  Metabolit  sekunder T. longibrachiatum dan M2 :  Metabolit sekunder T.  viride. Pengujian    tahap  2  secara  i n  vivo dengan  perlakuan  MT0  :  Tanpa  metabolit sekunder  dan  tanpa  inokulasi  patogen;  MT1  : Tanpa  metabolit  sekunder,  inokulasi  patogen dan  MT2  :  aplikasi  metabolit  sekunder T. longibrachiatum dan inokulasi patogen. Pembuatan  metabolit  sekunder T. longibrachiatum dan T.  viride merujuk  pada metode      Soesanto et  al .,  (2014)  dan  Soesanto (2017).  Campuran  air  cucian  beras  dan  air kelapa  dengan  perbandingan  8:2    direbus sampai  mendidih,  kemudian  ditambahkan  gula pasir 10 g L -1 dan diaduk hingga rata. Larutan disaring  dengan  penyaring  yang  dilapisi selembar  kapas  dan  dimasukkan  ke  dalam jeriken  yang  sudah  disterilkan  menggunakan alkohol  70%,  kemudian  larutan  didinginkan. Biang  jamur  antagonis  sebanyak  50  mL dimasukkan  ke  dalam  jeriken  volume  1,5  L yang  sudah  berisi  medium  cair.  Kemudian dilakukan  pengadukan  manual  setiap  hari selama  kurang  lebih  1  minggu.  Metabolit sekunder  siap  digunakan  apabila  jeriken mengembang, warna larutan pekat, dan larutan tidak berbau.
Variabel  pengamatan  uji  in  vitro terhadap Zona  Hambat  Metabolit  Sekunder terhadap  Patogen C.  gloeosporioides dengan cara  mensuspensikan  isolat C.  gloeosporioides yang  sudah  berumur  1  minggu  dengan kerapatan  spora  10 5 ml -1 ,  kemudian  1  ml suspensi  patogen  dicampur  ke  dalam  cawan petri  yang  telah  berisi  media  PDA.  Kertas cakram steril ukuran 5 mm yang telah direndam dengan  metabolit  sekunder  konsentrasi  100% diletakkan  pada  bagian  tengah  media  PDA yang  telah  bercampur  dengan  patogen.   Media PDA  yang  lain  sebagai  kontrol  hanya diinokulasi  patogen.  Pengamatan  dilakukan setiap  hari  selama  7  hari  setelah  inkubasi,  dan diukur  diameter  vertikal  dan  horizontal  dari zona  hambat  dalam  satuan  milimeter  (mm) yang  terbentuk  di  sekitar  kertas  cakram.  Zona hambat  dihitung  berdasarkan  rumus      ZH= dimana ZH  = Zona hambat;
DH  =  Diameter  horizontal;  DV=  Diameter vertikal  dan  DS  =    Diameter  kertas  cakram (Davis dan Stout, 1971 dalam Kandoli, 2016) . Kekuatan zona hambat terhadap patogen dapat di  kategorikan  sebagai  :  Lemah  (zona  hambat 0-4  mm);  Sedang  (zona  hambat  (5-10  mm);
Kuat  (zona  hambat  11-20  mm);  dan  Sangat Kuat  (zona hambat >20 mm) Pengujian secara In Vivo terhadap buah pepaya varietas California dengan berat kurang lebih 1 kg dalam kondisi setengah matang dan bebas dari gejala infeksi patogen. Buah pepaya dilukai  dengan  cara  menusuk  buah  dengan jarum  steril  sebanyak  tiga  tusukan.  Buah pepaya yang telah dilukai kemudian diaplikasikan  metabolit  sekunder  dengan  cara menyemprotkan  10  mL  larutan  metabolit sekunder  ke  seluruh  bagian  buah  hingga merata.  Larutan  metabolit  sekunder yang terbaik  pada  tahap  kedua  terlebih  dahulu dicampurkan  dengan  bahan  perekat  yang terbuat  dari  air  rebusan  singkong.  Larutan metabolit  sekunder  diaplikasikan  sebelum inokulasi  patogen,  satu  hari  kemudian  pada permukaan  buah  diteteskan  suspensi  patogen sebanyak 10 µl dengan kerapatan spora 10 5 mL - 1 .  Buah  pepaya  diinkubasi  dalam  bak  plastik berukuran  40  cmx  30  cm  pada  suhu  ruang selama  7  hari  setelah  perlakuan,  bagian  atas baki  dibungkus  dengan  plastik  wraping. Sebagai  kontrol  positif,  buah  pepaya  tanpa pelapisan  diinokulasi  dengan  patogen C. gloeosporioides dan  kontrol  negatif  buah pepaya hanya disemprot dengan air steril.
Variabel  pengamatan  pada  uji in  vivo adalah  untuk  mengetahui  pengaruh  metabolit sekunder  terhadap 1) Masa inkubasi patogen yang  dihitung  berdasarkan  waktu  gejala pertama  muncul  pada  buah  pepaya  setelah diinokulasi  dengan  patogen; 2)  Diameter kerusakan buah diukur dengan menggunakan mistar,  pengukuran  dilakukan  pada  titik tusukan  yang  telah  menunjukkan  gejala serangan; 3)  Keparahan  penyakit mengacu pada  Hamdayanty, et  al. (2012)  yaitu  KP  = dimana  KP  =  Keparahan penyakit; ni = Jumlah buah dengan skor ke-I; vi =  nilai  skor  penyakit  ;  N  =  Jumlah  buah  yang diamati;  V  =  Nilai  skor  tertinggi;  Skor  tiap kategori  serangan  sebagai  berikut  :0  :  Tidak Bergejala  ;  1:  Bercak  ringan  pada  buah  (1- 25%); 2 : Bercak sedang pada buah (26-50%); 3  :  Bercak  sedang  disertai  busuk  ringan  (51- 75%);  4  :  Bercak  luas  dan  busuk  pada  buah (76-100%); 4)  Lama  waktu  simpan buah ditentukan  berdasarkan  periode  buah  tetap terlihat  segar,  tidak  busuk  selama  dalam penyimpanan sehingga masih layak dikonsumsi.
Data  hasil  pengamatan  dianalisis menggunakan uji F taraf α 0.05, dan apabila terdapat  pengaruh  perlakuan  dilanjutkan dengan uji BNJ 5%..

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Zona Hambat Metabolit Sekunder Trichoderma sp. terhadap Patogen C. gloeosporioides
Perlakuan metabolit sekunder T.
longibrachiatum dan T.  viride berpengaruh sangat nyata dan berbeda nyata antar perlakuan terhadap  diameter  zona  hambat  patogen C. gloeosporioides (Gambar 1).
Berdasarkan  Gambar  1  diketahui metabolit  sekunder T.  longibrachiatum (M1) dan T.  viride (M2)  memiliki  kekuatan  zona hambat  dengan  kategori  sangat  kuat  dan  kuat, masing-masing  dengan  diameter  zona  hambat sebesar 30,05 mm dan 19,17 mm (Gambar 2).
Gambar  1.    Rerata  diameter  zona  hambat metabolit sekunder T. longibrachiatum (M1)  dan T. viride (M2) terhadap pertumbuhan patogen C.  gloeosporioides ((BNJ 1,42) Gambar  2.    Kekuatan  zona  hambat  dari metabolit sekunder T. longibrachiatum (A)  dan T. viride (B) terhadap pertumbuhan patogen C. gloeosporioides s
Hal  ini      menunjukkan  bahwa  metabolit sekunder  dari  agens  hayati  tersebut  dapat bersifat  antimikroba  terhadap  patogen C. gloeosporioides. Beberapa  hasil  penelitian sebelumnya melaporkan perbedaan kemampuan  metabolit  sekunder T.  harzianum menghambat C.  capsici sebesar  22,2%  dan C. annum sebesar  37,5%  (Ainy,  2015);  filtrat T. viride dengan konsentrasi 10% menghambat C. capsici sebesar  66,4%  dan C.  gloeosporioides sebesar 52,52% (Aswini et al , 2016). Perbedaan kemampuan metabolit sekunder  dari  setiap  spesies Trichoderma menghambat pertumbuhan patogen  disebabkan oleh  beberapa  faktor  yang  memungkinkan bervariasinya  nilai  penghambatan  maksimum dan minimum sebagai agens pengendali hayati. Selain itu juga dipengaruhi oleh kepekaan dari patogen  terhadap  senyawa-senyawa  alkaloid yang  bersifat  antibiosis  yang  dihasilkan  oleh agens  hayati  tersebut.    Menurut  Putri  (2018) senyawa antibiotik sesquiterpene yaitu heptelidic  acid  ditemukan  dalam  filtrat metabolit sekunder T. viride .
Gambar 3. Mikroskopik  morfologi  hifa  patogen.  A.  Hifa  normal.  B.  Hifa  patogen  abnormal (membengkak  dan  lisis)  pada  perlakuan  metabolit  sekunder T.  longibrachiatum
(perbesaran 400x)
A B A B
Perlakuan metabolit sekunder T.
longibrachiatum dan T.  viride nampaknya berpengaruh  terhadap  morfologi  hifa  patogen sehingga menjadi abnormal, secara
mikroskopis terlihat perubahan bentuk hifa atau malformasi dimana hifa patogen membengkak,
terpelintir dan lisis (Gambar 3).
Senyawa antifungal yang dihasilkan oleh agens  hayati  akan  mengakibatkan  terjadinya pertumbuhan yang abnormal pada hifa. Hal ini disebabkan oleh sifat mikoparasit yang dimiliki oleh Trichoderma sp.  dapat  menyebabkan  hifa patogen menyusut dan lisis, karena Trichoderma sp. menghasilkan enzim hydrolytic β-1, 3-glucanases, β-1,6- glucanases,  kitinase, dan protease untuk mempenetrasi sel inang (Mulyani et al., 2017). Sebelumnya  Gustiara  (2017)  telah  melaporkan bahwa T. longibrachiatum mampu menghambat  pertumbuhan  patogen Fusarium oxysporum f.sp. cubense secara in vitro sebesar 60%.
Masa Inkubasi Patogen Masa  inkubasi  merupakan  waktu  yang diperlukan  patogen  untuk  melakukan  infeksi yang  dapat  dihitung  berdasarkan  waktu  gejala pertama  muncul  pada  buah  pepaya  setelah diinokulasi.  Aplikasi  metabolit  sekunder T. longibrachiatum pada  buah  pepaya  tidak berpengaruh terhadap masa inkubasi patogen C. gloeosporioides terkait dengan banyaknya buah bergejala (Gambar 4).
Gejala antraknosa patogen C.
gloeosporioides pada  buah  pepaya  mulai nampak  pada  hari  ke  5  setelah  inokulasi. Aplikasi  metabolit  sekunder    mampu melindungi buah dari infeksi patogen sehingga buah  yang  bergejala  hanya  6,66%  (MT2) dibandingkan  pada  buah  yang  tidak  diaplikasi metabolit  sekunder  (MT1)  buah  bergejala mencapai    20%.  Hal  ini  berkaitan  dengan kandungan  senyawa  fenolik  dalam  metabolit sekunder yang berasal dari T. longibrachiatum mampu  menginduksi  ketahanan  jaringan  buah pepaya  sehingga  persentase  buah  gejala  lebih kecil.  Menurut  Soesanto et  al. (2014)  bahwa peningkatan senyawa fenol dalam cabai merah secara kualitatif akan mempengaruhi peningkatan  ketahanan  tanaman  terhadap serangan patogen. Gambar 4.   Pengaruh  metabolit  sekunder T. longibrachiatum terhadap  masa inkubasi patogen C. gloeosporioides
Selain  itu  terdapatnya  kandungan senyawa  tanin  pada  kulit  buah  akan mempengaruhi  persentase  buah  bergejala, seperti  yang  dilaporkan  oleh    DeRito  dan Madsen (2009). Soesanto & Rahayuniati (2009) juga menyatakan bahwa penerapan T. koningii , T.  harzianum dan Gliocladium  virens dapat meningkatkan  glikosida,  tanin  dan  saponin pada bibit pisang secara kualitatif.
Kerusakan Buah Aplikasi metabolit sekunder T.
longibrachiatum sebagai coating pada  buah pepaya mampu menekan pertumbuhan patogen C.  glogeosporioides dan  mampu  menguragi kerusakan  buah  akibat  penyakit  antraknosa (Gambar 5).
Berdasarkan  Gambar  5  menunjukkan bahwa  diameter kerusakan buah tertinggi yaitu sebesar 4,04 mm pada perlakuan tanpa aplikasi metabolit  sekunder  (MT1)  dan  berbeda  nyata dengan  buah  pepaya  yang  diaplikasi  dengan metabolit  sekunder  (MT2)  diameter  kerusakan buah hanya sebesar 1,93  mm.
Metabolit sekunder T. longibrachiatum sebagai  pelapis  ( coating )  pada  buah  pepaya mampu menghambat perkembangan patogen C.
gloeosporioides sehingga mengurangi kerusakan  buah.  Hal  ini  disebabkan  adanya senyawa  antijamur  yang  terkandung  dalam metabolit  sekunder T.  longibrachiatum seperti ergokonin  A  dan  sejumlah  enzim  yang berfungsi untuk memperkuat ketahanan dinding jaringan buah (Gustiara, 2017). Senyawa  yang bersifat  antibiotik    dieksresikan  oleh Trichoderma sp.  yaitu  koninginin,  viridin,  dan harzianopyridone. Metabolit  sekunder tersebut dapat  menginduksi  ketahanan  tanaman,  yaitu berperan  sebagai  elisitor  dalam  mekanisme pertahanan  tanaman  melawan  patogen.  Hal
tersebut  dilaporkan  oleh  Vinale et  al (2014), bahwa  senyawa  penginduksi  ketahanan  seperti kininginins, cytosperone, trichodermol, manitol,  dan  2-hidroksimalonate  acid  dan viridins  yang  dapat  mencegah  perkembangan spora jamur patogen Botrytis allii, Colletotrichum  lini,  Fusarium  caeruleum, Penicillium  expansum,  Aspergillus  niger dan Stachybotrys atra.
ambar  5.    Pengaruh  metabolit  sekunder T.
longibrachiatum terhadap kerusakan  buah    oleh  patogen C. gloeosporioides

## Keparahan Penyakit
Aplikasi metabolit sekunder
menunjukkan  perbedaan  yang  nyata  pada keparahan  penyakit.  Tingkat  keparahan penyakit  tertinggi  rata-rata  51,6  %  terdapat pada  perlakuan  tanpa  coating  metabolit sekunder  (MT1),  sedangkan  pada  buah  yang dilapisi  dengan  metabolit  sekunder  (MT2) kerusakan  hanya  16,66  %.  Pada  perlakuan kontrol  (MT0)  terdapat  kerusakan  buah  yang cukup tinggi (Gambar 6).
Patogen
C. gloeosporioides menginfeksi  buah  melalui  jaringan  buah  yang terluka  dan  memproduksi  berbagai  struktur khusus  selama  masa  infeksi.  Seluruh  proses infeksi  termasuk  pembentukan  struktur  jamur akan  menyebabkan  jaringan  buah  mengalami pembusukan hingga nekrosis.
Gambar 6.    Pengaruh  metabolit  sekunder T.
longibrachiatum
terhadap keparahan penyakit  antraknosa
Jaringan  buah  yang  mati  akan  menjadi sumber  inokulum  baru  yang  dapat  menyebar dan  menginfeksi  jaringan  buah  lain  (Indra, 2017).  Antraknosa  merupakan  penyakit  yang bersifat  laten,  dimana  patogen  masih  dapat berkembang  walaupun  buah  dipanen  dalam keadaan  baik.  Hal  ini  karena  patogen C. gloeosporioides dapat menyerang buah sebelum  dan  sesudah  panen  (Haggag  dan Singer,  2013)  dan  proses  infeksinya  dimulai sejak  di  pertanaman  dan  bersifat  laten  hingga pada  tahap  pasca  klimakterik  buah  (Maeda et
al ., 2014).
Umur Simpan Buah Lama  umur  simpan  buah  ditentukan berdasarkan  periode  buah  tetap  terlihat  segar, tidak busuk, dan aroma buah yang tidak berbau selama  dalam  penyimpanan  sehingga  masih layak dikonsumsi. Perlakuan metabolit sekunder  (MT2)  dapat  memperpanjang  umur simpan  buah  menjadi    8,33  hari,  sedangkan tanpa  perlakuan  metabolit  sekunder  umur simpan buah lebih pendek (Gambar 7).
Hal ini juga berkaitan dengan keparahan penyakit  yang  lebih  tinggi  pada  buah  yang tidak  diberi  coating  metabolit  sekunder. Coating atau  pelapisan  dengan  metabolit sekunder
T. longibrachiatum mampu memperpanjang  lama  umur  simpan  buah pepaya,  karena  mengandung  senyawa-senyawa flavonoid  yang  bersifat  antimikroba.  Soesanto et al. (2014) juga menyatakan bahwa metabolit sekunder  dari  mikroba,  seperti  alkaloid,  fenol, flavonoid,  glikosida,  dan  fitoaleksin  bersifat toksik  dan  menghambat  pertumbuhan  patogen sehingga  dapat  mempengaruhi  ketahanan tanaman terhadap patogen.
Gambar  7.    Pengaruh  metabolit  sekunder T. longibrachiatum terhadap  lama umur simpan buah
Sejalan dengan Wachjadi et al . (2013), bahwa senyawa fenol pada tanaman berhubungan langsung dengan tingkat ketahanan  tanaman  terhadap  infeksi  penyakit yang  dapat  menghambat  pertumbuhan  patogen
C.  gloeosporioides sehingga  kerusakan  pada buah  dapat  diminimalisir. Coating dengan metabolit  sekunder  mikroba  berfungsi  sebagai bahan  pembawa  senyawa-senyawa  seperti antimikroba,  antioksidan,  flavor  maupun  zat warna.  Pelapisan  juga  dapat  menghambat terjadinya  oksidasi  sehingga  dapat  mencegah terjadinya penurunan
kualitas serta memperpanjang  lama  umur  simpan  buah  . Miskiyah  (2011)  melaporkan  bahwa coating yang  ditambah  dengan  vitamin  C  berpengaruh terhadap  lama  umur  simpan  paprika  yaitu  3-7 hari.

## KESIMPULAN
Berdasarkan  pengujian  secara  in  vitro metabolit sekunder Trichoderma longibrachiatum dan Trichoderma  viride menghasilkan kemampuan penghambatan yang sangat  kuat  dan  kuat    dengan  zona  hambat masing-masing dengan sebesar  30,05 mm dan 19,17  mm  terhadap  perkembangan  penyakit antraknosa  ( Colletotrichum  gloeosporioides ). Kemampuan T.  longibrachiatum sebagai pelapis  (coating)  buah  pepaya  pascapanen mampu  menghambat  perkembangan  penyakit antraknosa  berdasarkan  diameter  kerusakan buah lebih kecil (1,93 mm), keparahan penyakit hanya 16,66 %, dan umur simpan buah menjadi lebih lama yaitu menjadi 8,33 hari.
Aplikasi metabolit sekunder yang berasal dari T.  longibrachiatum dapat  menjadi alternatif upaya pengendalian penyakit antraknosa  pada  buah  pepaya  pascapanen karena lebih aman dan ramah lingkungan.

## DAFTAR PUSTAKA
Ainy,  E.Q.,  R.  Ratnayani  dan  L.  Susilawati.
2015. Uji Aktivitas Antagonis Trichoderma  harzianum 11035  terhadap Colletotrichum  capsici TCKR2  dan Colletotrichum acutatum
TCK1  Penyebab  Antraknosa  pada
Tanaman  Cabai.  Prosiding  Seminar Nasional  XII  Pendidikan  Biologi  FKIP UNS 2015. p 892-897
Aswini A., Sharmila T., Raaga K., Sri Deepthi
R. and Krishna M. S. R. 2016. In vitro antifungal activity of Trichoderma strains on pathogenic fungi inciting hot pepper (Capsicum annuum L.). Journal of Chemical and Pharmaceutical Research Vol 8 (4): p 425-430
Badan Pusat Statistik. 2019. Produksi Tanaman Buah-Buahan. (https://www.bps.go.id/site/resultTab). (Diakses 10 April 2019).
DeRito  CM  &  Madsen  EL.  2009.  Stable isotope  probing  reveals  Trichosporon yeast  to  be  active  in  situ  in  soil  phenol metabolism. ISMEJ. 3: 477–485.
El-Ramady, H. R., Szabolcsy E. D., Abdalla N. A.,  Taha  H.  S.  and  Fari  M.  2015.
Postharvest  management  of  fruits  and vegetables  storage. Sus  Agric  Rev. 15: 65-152.
Gustiara, T. 2017. Keragaman jamur antagonis pada  rhizosfer kalakai ( Stenochlaena palustris )  (BURN.)  BEDD.)  di  tanah gambut serta potensinya dalam mengendalikan Fusarium  oxysporum f.sp. cubense . Skripsi. Fakultas Pertanian.  Universitas  Palangka  Raya. Palangka Raya.
Haggag  W.  M.  dan  Singer  S.    2013.    First report  of Colletotrichum  capsici causing pre  and  postharvest  anthracnose  on papaya  in  Egypt. Int  J  Engineer  Innov Technol . 3(6):151–152. Hamdayanty,  Yunita  R.,  Amin  N.  N.  dan
Damayanti  D.  A.  2012.  Pemanfaatan kitosan untuk mengendalikan antraknosa pada pepaya ( Colletotrichum gloeosporioides ) dan meningkatkan daya simpan  buah. Jurnal  Fitopatologi
Indonesia . 8(4): 97-102 Indra,  R.  S.  2017.  Pengaruh  kitosan  dan  suhu simpan sebagai upaya perlindungan buah pepaya  ‘california’  terhadap  jamur Colletrotrichum  gloeosporioides (Penz.) Sacc.  Skripsi.  Fakultas  Pertanian. Universitas Lampung. Bandar Lampung Kandoli F., Abijulu J dan Leman M. 2016. Uji daya  hambat  daun  durian  ( Durio zybethinus ) terhadap pertumbuhan
Candida  albicans secara  in  vitro. Pharmacon  Jurnal  Ilmiah  Farmasi .  5 (1): 46-52
Maeda,  C.  and  Nelson  S.   2014.    Anthracnose of  papaya  in  Hawai’i.    Mãnoa  (US):
College  of  Tropical  Agriculture  and Human Resources. University of Hawai’i
Miskiyah,  Widaningrum,  &  C.  Winarti.  2011 Aplikasi  Edible  Coating  Berbasis  Pati Sagu  dengan  Penambahan  Vitamin  C pada Paprika : Preferensi Konsumen dan Mutu Mikrobiologi. J. Hort . 21(1):68-76
Mulyani,  R.  B.,  Panupesi  H.,  Nion  Y.  A.  dan Gustiara  T.  2017.  Potensi Trichoderma longibrachiatum asal  perkaran  tanaman kalakai Stenochlaena  palustris tanah gambut  menekan Fusarium  oxyporum f.sp. cubense :  Khaeruni  R.,  Muhidin.,
Sutariati G. A. K., Rahayu, Bande LOS, Gusnawaty  HS,  Hidayat  H.,  Baharudin,
Rosmana  A.,  Kuwinanti  T.,  Budi  I.  S., Linawati,  Rina  S  (eds).  Prosiding Seminar  &  Kongres  Perhimpunan Fitopatologi Indonesia. 393-401. Kendari. 03-05 Oktober 2017 Putri,  A.Y. 2018.    Uji  Aktivitas  Antifungi  dan Fitokimia  Metabolit  Sekunder  kapang Endofit Trichoderma sp.  terhadap
Kapang  Patogen Colletotrichum sp.  dan Fusarium  oxysporum pada  Tanaman
Cabai.    Skripsi.    Fakultas  Sains  dan
Teknologi. UIN Maulana Malik Ibrahim, Malang. 90 hlmn.
Raghav, P. K., Agarwal N. and Saini M. 2016.
Edible coating of fruits and vegetables: a review. IJSRME. 1(1): 188-205
Soesanto L dan Rahayuniati. 2009.
Pengimbasan ketahanan bibit pisang Ambon Kuning terhadap penyakit layu fusarium dengan beberapa jamur antagonis. J. HPT Tropika. 9(2): 130– 140. Soesanto,L.,  E.  Mugiastuti,  A.  Suyanto  dan
R.F. Rahayuniati. 2017.  Application Of Raw  Secondary  Metabolites  From  Two Isolates  Of Trichoderma  Harzianum Against  Anthracnose  On  Red  Chili Pepper  In  The  Field.  J.  HPT  Tropika, Vol. 20, No. 1, March 2020.  P : 19–27 Soesanto  L.  2017.  Pengantar  Pestisida  Hayati:
addendum  metabolit  sekunder  agensia hayati. Rajawali Press. Jakarta Vinale  F.,  Sivasithamparam  K.,  Ghisalberti  E. L.,  Woo  S.  L.,  Nigro  M.,  Marra  R  and Lorito M.  2014. Trichoderma secondary metabolites  active  on  plants  and  fungal pathogens. The Open Mycology Journal . 8(1): 127–139.
Wiyono,  S.  dan  Manuwoto  S.  2008.  Penyakit
Antraknosa  pada  Pepaya  dan  Potensi Pengendaliannya.  Pusat  Kajian  Buah Tropika.  LPPM-IPB  dan  Departemen Proteksi  Tanaman  Fakultas  Pertanian IPB. Bogor.
Wulandari  A.  2014.  Pengaruh Trichoderma spp.  Terhadap  penyakit  antraknosa ( Colletotrichum  capsici )  pada  tanaman cabai  varietas  ferosa  dan  laris.  Skripsi.