## AKTA KIMIA

## INDONESIA
Metabolit Sekunder, Metode Ekstraksi, Dan Bioaktivitasnya Cabai (Capsicum)
Nur Hasanah 1 ; Sri Fatmawati 1*
1 Departemen Kimia, Fakultas Sains dan Analitika Data, Institut Teknologi Sepuluh Nopember (ITS) Kampus ITS Keputih Sukolilo, Surabaya 60111, Indonesia
Corresponding author: fatma@chem.its.ac.id

## Abstract
Chili  is  a  herbaceous  plant  from  Central  and  South  America  with  the  genus  Capsicum. Plants of this genus are reported to have  capsaicinoid compounds. Capsaicin is the main capsaicinoid compound in chili that can cause a hot sensation in this plant. This sensation can  be  used  to  relieve  pain,  so  this  compound  is  widely  used  as  an  analgesic  or  pain reliever  in  the  pharmaceutical  field.  In  addition, this  genus  of  plants  also  has  a  group  of carotenoid compounds that act as colorants in the fruit of these plants, phenolic, flavonoid, vitamin and volatile compound. The content of secondary metabolite on chili is influenced by  the  selection  of  the  method  and  conditions  extraction  that  research  related  to  chili extraction  has  been carried  out  with various  variations.  Several  extraction  methods  have been reported, namely maceration, soxhletation, and reflux to modern extractions such as sonication,  microwave,  subcritical  fluid and  supercritical  fluid  (SFE).  Bioactivity  in  chili fruit  has  been  reported  by  several  literatures  includes  anti-inflammatory,  antimicrobial, antioxidant,  antidiabetic,  anticancer  and  analgesic.  Although  the  bioactivity  of  this  plant has been widely reported, further research is needed to determine the safety, dosage and side  effects  of  chili  peppers.  Therefore,  this  review  aims  to  provide  scientific information about the extraction method and bioactivity of chili peppers which will be needed in further research.
Keywords: Chili ( Capsicum ), Secondary Metabolite, Extraction Methods,  Bioactivity

## Abstrak
Cabai merupakan tanaman yang berasal dari Amerika Tengah dan Selatan dengan genus Capsicum. Tanaman  genus  ini  dilaporkan  memiliki  turunan  senyawa  capsaicinoid.  Capsaicin  merupakan senyawa capsaicinoid utama pada  cabai yang dapat menimbulkan sensasi panas pada tanaman ini. Sensasi  tersebut  dapat  dimanfaatkan  untuk  meredakan  nyeri  sehingga  senyawa  ini  banyak dmanfaatkan  sebagai  obat  analgesik  atau  penghilang  rasa  sakit  di  bidang  farmasi.  Selain  itu, tanaman  genus  ini  juga  memiliki  kelompok  senyawa  karotenoid  yang  berperan  sebagai  pemberi warna  pada  buah  tanaman  tersebut,  fenolik,  flavonoid,  vitamin  dan  senyawa  volatil.  Kadar metabolit  sekunder  cabai  ini  dipengaruhi  oleh  pemilihan  metode  dan  kondisi  ekstraksi  yang digunakan sehingga penelitian terkait ekstraksi cabai ini banyak dilakukan dengan berbagai variasi. Beberapa metode ekstraksi yang digunakan yaitu maserasi, sokletasi, dan refluks hingga ekstraksi modern  seperti  sonikasi,  microwave,  subcritical  fluid  dan  supercritical  fluid  (SFE).  Bioaktivitas pada buah cabai yang telah dilaporkan oleh beberapa literatur meliputi antiinflamasi, antimikroba,

## Nur Hasanah, dkk. Akta Kimia Indonesia 7(1), 2022, 14-61
antioksidan, antidiabetes, antikanker dan analgesik. Meskipun bioaktivitas tanaman ini telah banyak dilaporkan, penelitian  lebih  lanjut  diperlukan  untuk  mengetahui  keamanan, dosis  penggunaan  dan efek samping dari cabai tersebut. Oleh karena itu, review ini bertujuan untuk memberikan informasi ilmiah  tentang  Senyawa  metabolit  sekunder,  metode  ekstraksi  dan  bioaktivitas  buah  cabai  yang nantinya diperlukan dalam penelitian selanjutnya.
Kata kunci: Cabai ( Capsicum ), Metabolit Sekunder, Metode Ekstraksi, Bioaktivitas

## 1. Pendahuluan
Cabai  ( Capsicum )  merupakan  salah satu  tanaman  perdu  yang  berasal  dari Amerika  Tengah  dan  Selatan.  Hingga  saat ini,  tanaman  cabai  diketahui  terdapat  200 varietas  dari  satu  spesies  yang  tersebar  di berbagai  negara.  Di  Indonesia,  terdapat  tiga jenis  cabai  yang  sering  dibudidayakan  dan dimanfaatkan  oleh  penduduk  Indonesia.
Ketiga  cabai  tersebut  yaitu  cabai  rawit  ( C. annuum ),  cabai  besar  atau  cabai  keriting  ( C.
annuum ) dan paprika ( C. annuum ).
Umumnya  cabai  telah  digunakan  sebagai rempah  atau  bumbu  dapur,  perasa  atau  zat aditif  dan  pewarna  pada makanan  (Gosmann dkk.,  2012;  Rad  dkk.,  2018;  Idrees  dkk., 2020).  Selain  itu,  penggunaan  cabai  juga telah  dimanfaatkan  sebagai  obat  tradisional di berbagai negara. Di India, cabai digunakan sebagai  obat  tradisional  untuk  mengobati sakit  gigi,  nyeri  otot  dan  demam.  Cabai kering  juga  dimanfaatkan  sebagai  media fermentasi dalam pembuatan minuman tradisional  oleh  komunitas  etnis  Garo  di Bangladesh  (Meghvansi  dkk.,  2010).  Buah cabai  ini  mudah  sekali  ditemui  di  seluruh
negara  baik  dalam  bentuk  kering,  segar maupun  bubuk.  Hal  ini  yang  menyebabkan produksi  cabai  menjadi  tinggi  terutama  di wilayah  Asia  (65%),  Amerika  (13,3%), Eropa (11,9%) dan Afrika (10%)  (Jarret dkk. 2019).
Senyawa  aktif atau  yang  dikenal  juga sebagai  metabolit  sekunder  pada  buah  cabai telah banyak dilaporkan di beberapa penelitian.  Sebagian  besar  senyawa  aktif yang  telah  diidentifikasikan  merupakan kelompok capsaicinoid (Popelka dkk., 2017), karotenoid  (O’Connell  dkk.,  2010),  fenolik (Zhuang  dkk.,  2012),  flavonoid  (Bae  dkk., 2012),  vitamin  (Palevitch  dan  Craker,  1995) dan  senyawa  volatil  seperti  kelompok terpenoid  (Gogus  dkk.,  2015).  Kelompok capsaicinid  merupakan  kelompok  senyawa yang  memberikan  sensasi  hangat  hingga panas  ketika  terkena  kulit  (Sharma  dan sanatombi, 2008). Kelompok capsaicinoid ini memiliki  peran  penting  sebagai  antikanker (Qian  dkk.,  2016)  dan  analgesik  atau  pereda nyeri  (Amani  dkk.,  2019).  Kemudian kelompok  karotenoid  merupakan  kelompok senyawa yang memberikan warna pada buah

## Nur Hasanah, dkk. Akta Kimia Indonesia 7(1), 2022, 14-61
cabai (O’Connell dkk., 2010). Kelompok ini beserta  vitamin,  fenolik  dan  flavonoid diketahui  berperan  dalam  bioaktivitas  buah cabai  sebagai  antioksidan  (Bosland  dan Votava,  2012;  Wormit  dkk.,  2019).  Tidak hanya  itu,  buah  cabai  juga  memiliki bioaktivias  sebagai  anti  antimikroba  (Keser dkk.,  2018),  antiinflamasi  (Romao  dkk., 2016)  dan  antidiabetes  (Azlan  dkk.,  2020)
Berdasarkan hasil penelitian tersebut, review ini  bertujuan  untuk  memberikan  informasi ilmiah  tentang  metabolit  sekunder  dan bioaktivitas buah cabai yang telah dilaporkan pada  penelitian  sebelumnya  sehingga  dapat berguna  dan  bermanfaat  bagi  penelitian selanjutnya.

## 2. Botani dan Taksonomi Tanaman Cabai

## (Capsicum)
Cabai ( Capsicum )
merupakan
tanaman  perdu  yang  tersebar  pada  sebagian besar  daerah  dengan  suhu  hangat.  Daerah Amerika  Tengah  dan  Selatan  merupakan daerah asal tanaman cabai tersebut. Tanaman cabai  ini  memiliki  sebutan  yang  berbeda- beda pada beberapa negara seperti Chili atau
Pepper di  Inggris, Surkhmirch di  Paskitan,
Lalmirca di India dan Filfil-e-ahmar di Arab.
Hingga  sekarang,  terdapat  200  varietas  dari spesies  cabai  yang  tersebar  di  seluruh  dunia.
Namun  hanya  lima  spesies  dari  tanaman
cabai  ini  yang  terkenal  di  berbagai  negara.
Kelima spesies tersebut yaitu C. annuum , C. frutescens , C. baccatum , C. chinense , dan C. pubenscens . Di  daerah  asalnya,  cabai  telah digunakan  sebagai  bahan  makanan  maupun obat  tradisional    (Gosmann  dkk.,  2012;  Rad dkk.,  2018;  Idrees  dkk.,  2020).  Taksonomi dari  tanaman  ini  yaitu  kerajaan: Plantae , divisi: Spermatophyta , kelas: Magnoliopsida , bangsa: Solanales ,  suku: Solanaceae dan marga: Capsicum (Idrees dkk., 2020).
Tanaman  cabai  tumbuh  dengan  subur pada  negara  tropis  dan  semitropis  dibawah sinar  matahari  yang  cukup  seperti  negara Indonesia.  Di  negara  Indonesia,  terdapat beberapa jenis cabai yang sering dimanfaatkan  oleh  penduduk.  Jenis  cabai tersebut  terdiri  dari  cabai  besar,  cabai keriting,  cabai  rawit  dan  paprika  (Wijaya dkk., 2020). Tanaman cabai ini dapat tumbuh setinggi  40-80  cm  dengan  batang  berwarna hijau  dan  bercabang.  Daun  cabai  berwarna hijau muda atau hijau tua dengan bentuk oval atau  elips.  Panjang  daun  tanaman  cabai sekitar 3-11 cm dengan lebar 1-5 cm. Bunga cabai  umumnya  berukuran  kecil  yang tumbuh pada ketiak daun dengan petal bunga berwarna  putih  atau  ungu  dan  berdiameter sekitar  2,54–3,81  cm.  Tidak  hanya  itu, tanaman  cabai  memiliki  tangkai  bunga  yang pendek  dan  menekuk  sehingga  serbuk  sari

## Nur Hasanah, dkk. Akta Kimia Indonesia 7(1), 2022, 14-61
mudah  terjatuh  serta  dapat  melakukan penyerbukan  sendiri.  Tanaman  cabai  ini dapat memproduksi buah dengan subur pada suhu sekitar 18–30 °C dan pH tanah berkisar 5,5-6,8.  Umumnya  buah  cabai  ketika  masih muda  akan  berwarna  hijau  dan  berubah menjadi  merah  ketika  sudah  tua  atau  siap untuk dipanen. Bentuk buah cabai umumnya bulat  memanjang  dengan  ujung  runcing dengan  panjang  sektar  2-20  cm.  Namun terdapat  beberapa  jenis  cabai  yang  memiliki bentuk  bulat  seperti  ceri  misalnya  cabai
habanero  dan  berbentuk  kotak  contohnya paprika. Biji cabai berbentuk bulat dan pipih dengan  diameter  sekitar  3-5  mm,  berwarna kuning  serta  berjumlah  banyak  tergantung dari jenis cabai. Biji cabai dapat berkecambah  pada  suhu  sekitar  25–30  °C (Vassalotti  dkk.,  2017;  Idrees  dkk.,  2020). Penampakan  bentuk  jenis  buah  dan  tanaman cabai di Indonesia ditunjukkan pada Gambar 1.
Gambar 1. Buah dan Tanaman Cabai di Indonesia

## Nur Hasanah, dkk. Akta Kimia Indonesia 7(1), 2022, 14-61
3.  Botani  dan  Taksonomi  Tanaman  Cabai (Capsicum)

## 3.1 Capcaisinoid
Capsaicinoid  merupakan  salah  satu metabolit  sekunder  kelompok  alkaloid  yang banyak  terdapat  pada  cabai.  Kelompok senyawa ini umumnya akan memberikan rasa pedas  atau  sensasi  terbakar  pada  kulit  ketika bersentuhan  dengan  buah  cabai  tersebut.
Kelompok  capsaicinoid  ini  terdiri  dari capsaicin  (69%) [1] sebagai  senyawa  utama diikuti  oleh  dihidrocapsaicin  (22%) [2] ,
nordihidrocapsaicin (7%) [3] , homocapsaicin
(1%) [4] , homodihidrocapsaicin (1%) [5] dan nonivamida  (1%) [6] (Kehie  dkk.,  2015;
Popelka  dkk.,  2017).    Capsaicin  dan dihidrocapsaicin  inilah  yang  memberikan 90%  sensasi  terbakar  atau pungency pada buah  cabai  (Sharma  dan  sanatombi,  2008).
Kedua senyawa tersebut dilaporkan memiliki tingkat kepedasan paling tinggi dibandingkan senyawa lainnya pada kelompok ini. Tingkat kepedasan  capsaicin  dan  dihidrocapsaicin diketahui sebesar 16.000.000 dan 15.000.000 SHU  (Govindarajan  dan  Sathyanarayana, 2009;  McCarty  dkk.,  2015).  Biosintesis capsaicinoid pada tanaman cabai ini dilaporkan  melalui  reaksi  kondensasi  antara asam  lemak  dan vanillylamine hingga terbentuk  senyawa  dengan  struktur  vanilloid dengan  gugus  amida  dan  rantai  karbon.
Biosintesis  kelompok  ini  diketahui  melalui dua  jalur  yaitu  jalur  fenilpropanoid  yang membentuk  struktur  kerangka  senyawa fenolik dan metabolisme asam lemak. Gugus vanillylamine awalnya berasal dari phenylalanine melalui jalur sikimat sedangkan gugus asam lemak pada kelompok capsaicinoid  berasal  dari  valine  pada  jalur pembentukan kerangka asam lemak (Li dkk., 2011; Kehie dkk., 2015). Senyawa capsaicinoid ini umumnya mudah larut dalam pelarut  organik  dengan  kepolaran  sedang sampai  rendah  seperti  metanol,  etanol maupun asetonitril (Junior dkk., 2018).
Kelompok  capsaiciniod  ini  umumnya banyak  terdapat  pada  bagian  buah  terutama bagian  biji  dan  plasenta  yang  terlihat  pada Gambar 2. Hal ini dibuktikan pada penelitian sebelumnya  yang  mengekstraksi  bagian daging  buah,  plasenta  dan  biji  pada  tujuh kultivar  cabai  dari  Mexico.  Cabai  yang digunakan  pada  penelitian  ini  yaitu  cabai chawa, dulce, sukurre dan xcat’ik ( Capsicum annuum L.  var.  annuum),  maax  ( Capsicum annuum L.  var.  aviculare),  harbanero  jingga serta  habanero  putih  ( Capsicum  chinense
Jacq.).  Dari  hasil  penelitian  tersebut,  bagian plasenta dilaporkan memiliki kadar capsaicin dan  dihidrocapsaicin  paling  tinggi  sekitar 640–262.886  µg/g  dan  370–5043  µg/g sedangkan  capsaicin  dan  dihidrocapsaicin

## Nur Hasanah, dkk. Akta Kimia Indonesia 7(1), 2022, 14-61
pada  bagian  lainnya  berturut-turut  berkisar
897–3195  µg/g  dan  439–1689  µg/g  untuk bagian  biji  serta  220–3914  µg/g  dan  87–663
µg/g  untuk  bagian  daging  buah  (Sánchez dkk., 2017).
Gambar 2. Bagian Buah Cabai

## 3.2 Karotenoid dan Vitamin
Karotenoid merupakan kelompok
senyawa yang memberikan warna pada buah cabai. Kelompok senyawa ini dikenal sebagai
pigmen pada buah cabai. Kelompok senyawa ini  umumnya  terakumulasi  tinggi  pada bagian daging buah. Hal ini yang
menyebabkan  adanya  perubahan  warna  pada
[1] [2] [3] [4] [5] [6] Tangkai Buah Kulit Buah Daging Plasenta Biji

## Nur Hasanah, dkk. Akta Kimia Indonesia 7(1), 2022, 14-61
buah  cabai  selama  pertumbuhan.  Saat  buah cabai  belum  matang,  pigmen  klorofil  dan lutein [7] lebih  banyak  terdapat  pada  daging buah  sehingga  menimbulkan  warna  hijau pada  buah  cabai.  Perubahan  warna  buah cabai  dari  hijau  menjadi  kuning-jingga menandakan adanya penurunan kedua pigmen  sebelumnya  dan  digantikan  denga terbentuknya  β-karoten [8] ,  β-cryptoxanthin
[9] , zeaxanthin [10] , antheraxanthin [11] dan violaxanthin [12] .  Setelah  buah  cabai matang,  kelima  senyawa  sebelumnya  akan tergantikan oleh capsorubin [13] dan capsanthin [14] yang  memberikan  warna merah pada buah cabai. Biosintesis kelompok karotenoid  ini  diketahui  melalui  jalur plastidal yang membentuk monomer isopentil pirofosfat. Prekursor pada jalur biosintesis ini yaitu piruvat gliseraldehida-3-fosfat (O’Connell dkk., 2010).
Kelompok  karotenoid  pada  beberapa jenis  buah  cabai  juga  telah  diteliti  oleh penelitian  sebelumnya.  Salah  satu  penelitian tersebut  menggunakan  lima  kultivar  cabai jenis C.  annuum yang  terdiri  dari  cabai  730
F1,  1245  F1,  amazon  F1,  serademre  8  and kusak  295F1.  Ekstraksi  senyawa  karotenoid pada kelima cabai tersebut dilakukan dengan pelarut  aseton  hingga  warna  pada  semua cabai  memudar.  Selanjutnya  ekstrak  cabai tersebut  diidentifikasi  dengan  kromatografi
cair kinerja tinggi (KCKT). Hasil identifikasi menunjukkan  adanya  kelompok  karotenoid pada  kelima  sampel  cabai  yang  meliputi capsanthin, capsolutein, capsorubin, violaxanthin,  zeaxanthin,  β-karoten  dan  β- cryptoxanthin  (Topuz  dan  Ozdemir,  2007). Tidak  hanya  itu,  setiap  spesies  buah  cabai juga dilaporkan memiliki komposisi senyawa karotenoid  yang  berbeda.  Buah  cabai habanero  merah  ( Capsicum  chinense ), naga morich ( Capsicum  chinense ) dan sinpezon ( C.  annuum )  memiliki  kadar  β-karoten  yang lebih  tinggi  sedangkan  pada  cabai serrano ( C.  annuum ), tabasco ( C.  frutescens )  dan jalapeno ( C.  annuum ),    karotenoid  tertinggi diperoleh  pada  capsanthin.  Antheraxanthin, capsanthin dan zeaxanthin dilaporkan banyak terdapat pada cabai habanero jingga ( Capsicum chinense ). Kemudian cabai habanero  emas  ( Capsicum  chinense )  dan scotch bonnet ( Capsicum chinense ) diketahui memiliki kadar lutein, α-karoten [15] , dan β- karoten pada daging buahnya (Giuffrida dkk., 2013).
Selain  karotenoid,  buah  cabai  juga dilaporkan memiliki beberapa vitamin seperti provitamin  A  (karotenoid)  ,  asam  arkorbat (vitamin  C) [16] dan  tokoperol  (vitamin  E)
[17] .  Buah  cabai  segar  diketahui  menjadi salah  satu  sumber  vitamin  C  dibandingkan dengan tomat, wortel, brokoli, mentimun dan

## Nur Hasanah, dkk. Akta Kimia Indonesia 7(1), 2022, 14-61
selada.  Kadar  vitamin  C  pada  buah  cabai jenis C. annuum berkisar 15,2-64,9 mg/100 g berat buah segar (Topuz dan Ozdemir, 2007; Bosland  dan  Votava,  2012).  Tokoperol  atau vitamin  E  pada  buah  cabai  merah  termasuk golongan  moderat  dibandingkan  dengan mentimun,  wortel  dan  selada.  Kadar  vitamin E  pada  biji  paprika  dilaporkan  sekitar  322-
883  µg/g  berat  buah  segar  (Palevitch  dan
Craker, 1995). Meskipun buah cabai ini tidak memiliki  vitamin  A  di  dalamnya,  namun kelompok karotenoid seperti α dan β-karoten dapat diubah menjadi retinol atau vitamin A. Provitamin  A,  C  dan  E  pada  buah  cabai  ini memberikan peranan penting terhadap bioaktivitas cabai sebagai antioksidan (Bosland dan Votava, 2012).
[7] [8] [9] [10]

## Nur Hasanah, dkk. Akta Kimia Indonesia 7(1), 2022, 14-61

## 3.3 Flavonoid dan Fenolik
Kelompok fenolik dan flavonoid pada cabai  telah  dilaporkan  pada  beberapa penelitian. Kedua kelompok senyawa tersebut  juga  berperan  penting  dalam bioaktivitas  cabai  sebagai  antioksidan  selain
karotenoid dan vitamin (Wormit dkk., 2019). Kadar  kelompok  fenolik  dan  flavonoid  pada cabai  ini  berada  di  urutan  keempat  tertinggi setelah  bawang,  brokoli  dan  bayam  (Alam dkk., 2018; Gan dkk., 2019).  Biosintesis dari kedua  kelompok  ini  diketahui  melalui  jalur
[12] [13] [11]
[14] [15] [16] [17]
sikimat dengan prekursor berupa asam amino phenylalanine (Wormit  dkk.,  2019).  Asam
galat [18] ,  asam  3,4-dihidroksibenzoik [19] ,
vanilin [20] ,  asam  benzoik [21] dan  asam salisilat [22] merupakan  kelompok  senyawa fenolik  pada  buah  cabai  segar  spesies C.
annuum serta C.  frutescens .  Buah  cabai
merah  dilaporkan  memiliki  kadar  kelompok fenolik lebih tinggi daripada buah cabai hijau (Zhuang  dkk.,  2012).  Kemudian  buah  cabai juga  dilaporkan  memiliki  senyawa  kuersetin [23] , luteolin [24] , kaempferol [25] , catechin
[26] dan apigenin [27] yang termasuk dalam kelompok flavonoid (Bae dkk., 2012).
[18] [19] [20] [21] [22] [23] [24] [25] [26]

## Nur Hasanah, dkk. Akta Kimia Indonesia 7(1), 2022, 14-61

## 3.4 Senyawa Volatil
Kelompok  terpenoid,  ester,  alkohol, keton  dan  aldehida  merupakan  kelompok senyawa  yang  berperan  dalam  aroma  dan rasa  dari  buah  cabai.  Kelompok  senyawa  ini juga  termasuk  dalam  senyawa  volatil  yang terdapat  pada  buah  cabai.  Buah  cabai  yang sudah  matang  memiliki  senyawa  linalool
[28] ,  2-3-butanodion [29] dan  3-carene [30]
yang  memberikan  rasa  pada  buah  cabai tersebut  (O’Connell  dkk.,  2010).  3,3-dimetil sikloheksanol [31] ,  heksil  pentanoat [32] ,
heksil  isopentanoat [33] ,  ( Z )-3-heksenil isopentanoat [34] , heksil 2-metilbetanoat [35]
dan  (1 R ,6 S )-himachalene [36] merupakan senyawa  volatil  utama  pada  buah  cabai habanero  ( C.  chinense Jack.)  (Duch  dkk.,
2007).  Buah  cabai scotch  bonnet ( C.
chinense )  juga  memiliki  beberapa  senyawa
volatil  utama  yang  terdiri  dari  heksil isopentanoat,  heksil  pentanoat,  pentil  3- metilbutanoat [37] ,  oktil  2-metilbutanoat
[38] ,  10-undecenol [39] ,  asam  ( E )-9- tertradekenoat [40] , 3,3-dimetil sikloheksanol dan  β-chamigrene [41] Gahungu  dkk.,  2011.
Berbeda  pula  dengan  cabai  merah  ( C. annuum ),    senyawa  volatil  yang  terdapat pada cabai tersebut meliputi 2-propenal [42] , 2-pentanon [43] ,  3-heksanol [44] ,  heksanal
[45] ,  ( E )-2-undecenal [46] ,  3,7,11-trimetil-1- dodekanol [47] ,  2-pentadecyn-1-ol [48] , geranil aseton [49] , o -cymene [50] , 3-carene, limonene [51] dan  squalene [52] (Gogus dkk., 2015). Selain sebagai pemberi rasa dan aroma,  senyawa  volatil  terutama  terpenoid diketahui  berkontribusi  dalam  bioaktivitas buah  cabai  sebagai  antimikrobial  (Lai  dkk., 2019).
[28] [29] [30] [31] [32] [33] [34] [35]

## Nur Hasanah, dkk. Akta Kimia Indonesia 7(1), 2022, 14-61
3.5 Tingkat Kepedasan Cabai
Cabai diketahui memiliki level kepedasan  yang  berbeda-beda  bergantung pada  spesies  atau  jenisnya  (Spence,  2019).
Besar  level  kepedasan  cabai  ini  dinyatakan
dengan  satuan Scoville  Heat  Unit (SHU).
Semakin  tinggi  nilai  SHU  ini  maka  semakin pedas  pula  rasa  cabai  tersebut  (Guzmàn  dan Bosland, 2017). Berdasarkan tingkat kepedasan tersebut, cabai carolina reaper ( C.
[37] [38] [39] [40] [41] [42] [43] [44] [45] [46] [47] [48] [49] [50] [51]

## Nur Hasanah, dkk. Akta Kimia Indonesia 7(1), 2022, 14-61
chinense )  merupakan  cabai  terpedas  dengan nilai  Scoville  sebesar  2.200.000  SHU sedangkan  paprika  dilaporkan  sebagai  cabai dengan  tingkat  kepedasan  terendah  dengan nilai 0 SHU. Selain itu, tingkat kepedasan ini juga  bergantung  pada  kadar  senyawa capsaicinoid terutama capsaicin yang terdapat  pada  cabai  tersebut.  Hal  ini dibuktikan  pada  penelitian  sebelumnya  yang meneliti kadar capsaicin pada tiga jenis cabai yaitu  cabai  rawit  ( C.  annuum ),    cabai  besar
( C. annuum ) dan paprika ( C. annuum ). Kadar capsaicin tertinggi  diperoleh  dari  cabai  rawit sebesar  4,12  mg/g  yang  diikuti  oleh  cabai besar  dan  paprika  dengan  kadar  capsaicin masing-masing  sekitar  1,32  dan  <0,02  mg/g. Cabai  rawit  ini  juga  diketahui  memiliki tingkat  kepedasan  lebih  tinggi  dibandingkan kedua  cabai  lainnya  (Mercy  dkk.,  2016). Level  kepedasan  Scoville  pada  beberapa jenis cabai dapat dilihat pada Tabel 1 berikut ini:

## Tabel 1 Level Kepedasan Beberapa Jenis Cabai
No Level Kepedasan (SHU) Jenis Cabai Referensi 1 0
Paprika ( C. annuum ) (Gaytan dkk., 2017) (Spence, 2019) (Taiti dkk., 2019) (Korkmaz dkk., 2021) 2 100 - 500 Pepperoncini ( C. annuum ) Sweet Chocolate ( C. annuum ) 3 500 – 1.000 Anaheim 4 1.000 – 2.500 Guajillo ( C. annuum ) Poblano ( C. annuum )
Mulato ( C. annuum )
Ancho ( C. annuum ) Miahuateco ( C. annuum )
Pasilla ( C. annuum )
Puya ( C. annuum )
Fresh Red Capsicum ( C.
annuum )
Industrial Isot ( C. annuum ) 5 2.500 – 5.000 Traditional Isot ( C. annuum )
Chilhuacle (78 DAP) ( C. annuum )
Brasileiro ( C. baccatum ) 6 5000 – 8.000 Jalapeno ( C. annuum )
Chilhuacle ( dehydrated ) Campana ( C. baccatum )

## Nur Hasanah, dkk. Akta Kimia Indonesia 7(1), 2022, 14-61
No Level Kepedasan (SHU)
Jenis Cabai Referensi
7 8.000 – 22.000
Mirasol ( C. annuum )
Serrano ( C. annuum )
Hornamental Red ( C. annuum ) Morita ( C. annuum ) Chacoense ( C. chinenese ) 8 12.000 – 30.000 Manzano ( C. pubenscens ) Chipotle ( C. annuum ) Chupetinho (C. chinense ) 9 30.000 – 50.000 Cayenne ( C. annuum )
Cabai besar ( C. annuum )
Cabai keriting ( C. annuum )
De arbol ( C. annuum ) 10 50.000 – 100.000 Cabai rawit ( C. frutescens ) Cabai Thailand ( C. frutescens ) 12 100.000 – 300.000 Datil ( C. chinense )
13 150.000 – 325.000 Habanero jingga ( C. chinense ) 14 350.000 – 575.000 Savina habanero merah ( C. chinense ) 15 800.000 – 1.001.300 Bhut jolokia atau Ghost Pepper ( C. chinense ) 16 1.191.595 New Mexico Scorpion ( C. chinense ) 17 1.382.118 Naga viper ( C. chinense ) 18 1.463.700 Trinidad scorpion butch T ( C. chinense ) 19 2.009.231 Trinidad moruga scorpion ( C. chinense ) 20 2.200.000 Carolina reaper ( C. chinense )

## Nur Hasanah, dkk. Akta Kimia Indonesia 7(1), 2022, 14-61
3.4  Pengaruh  Metode  Ekstraksi,  Kondisi Ekstraksi,  Jenis  Cabai  dan  Pelarut  pada Ekstraksi Cabai
Pada penelitian sebelumnya, cabai telah diekstraksi  dengan  beberapa  metode.  Mulai dari  ekstraksi  secara  konvensional  seperti maserasi, refluks dan sokletasi hingga ekstraksi  modern  seperti  sonikasi, microwave ,
subcritical fluid dan supercritical  fluid (SFE).
Ekstraksi  konvensional  umumnya  banyak dilakukan  hampir  pada  penelitian  sebelumnya dikarenakan  prosesnya  mudah  dilakukan. Namun,  ekstraksi  konvensional  ini  memiliki kelemahan seperti memerlukan pelarut dengan jumlah  banyak  dan  waktu  ekstraksi  yang cukup  lama.  Selanjutnya  ekstraksi  modern mulai diterapkan untuk mengurangi kelemahan dari  ekstraksi  konvensional.  Ekstraksi  modern ini  dinilai  lebih  selektif  juga  pengunaaan pelarut dan waktu ekstraksi relatif lebih rendah sehingga  proses  ekstraksi  menjadi  lebih  cepat (Gupta  dkk.,  2012;  Zhang  dkk.,  2018)  (Gupta dkk.,  2012;  Zhang  dkk.,  2018).  Berbagai metode  ekstraksi  ini  dilakukan  dengan  tujuan untuk mendapatkan metode yang optimal pada proses ekstraksi buah cabai. Selain itu, kondisi ekstraksi  dan  jenis  cabai  yang  digunakan  juga dapat mempengaruhi kadar metabolit sekunder yang  didapatkan  (Topuz  dan  Ozdemir,  2007;
Giuffrida  dkk.,  2013).  Hasil  ekstraksi  dari penelitian  sebelumnya,  dirangkum  dalam Tabel  2  dan  3.  Kelompok  metabolit  sekunder
yang  dilaporkan  pada  kedua  tabel  tersebut terdiri  dari  capsaicinoid  seperti  capsaicin ( CAP ), dihidrocapsaicin ( DCH ) dan
nordihidrocapsaicin
( n-DHC ), fenolik,
flavonoid, vitamin dan karotenoid.
Berdasarkan  data  pada  tabel  tersebut,  metode ekstraksi  diketahui  dapat  mempengaruhi  total senyawa  metabolit  sekunder  yang  terdapat pada buah cabai tersebut.
Selain itu, pemilihan pelarut juga dapat memberikan  hasil  yang  berbeda  pada  kadar senyawa yang didapatkan. Hal ini dipengaruhi oleh  kepolaran  dari  masing-masing  pelarut. Pada  Tabel  4,  senyawa  capsaicinoid  dan karotenoid  diketahui  terekstrak  dengan  baik pada  pelarut n -heksana  sedangkan  senyawa flavonoid  dan  fenolik  dapat  terlarut  dengan baik  pada  etil  asetat.  Namun  pelarut  metanol yang  kepolaran  lebih  tinggi,  diketahui  kurang bagus  untuk  mengekstraksi  capsaicinoid, capsanthin, karotenoid dan β-karoten.
Selanjutnya  kelompok  flavonoid  dan  fenolik juga  masih  cukup  baik  terekstrak  dengan pelarut  metanol,  etanol  dan  air  (Bae  dkk., 2012; Afolayan dan Olatunji, 2019).
Begitupula  dengan  proantosianidin  yang merupakan  salah  satu  polifenol  juga  dapat terekstrak  dalam  pelarut  etanol  dan  air sedangkan  vitamin  A  dan  asam  askorbat  atau vitamin C diketahui cukup baik terlarut dalam aseton  (Topuz  dan  Ozdemir,  2007;  Afolayan dan Olatunji, 2019).

## Nur Hasanah, dkk. Akta Kimia Indonesia 7(1), 2022, 14-61
Tabel 2 . Pengaruh Metode Ekstraksi, Kondisi Ekstraksi, Jenis Pelarut dan Jenis Cabai terhadap Kadar Capsaicinoid Cabai Metode Pelarut Kondisi Jenis Cabai CAP (mg/g) DHC (mg/g) n-DHC (mg/g) Referensi Maserasi Asetonitril T = 80 °C selama 4 jam dan pengadukan setiap 30 menit Cabai merah 730 F1 ( C. annuum ) 0,3077 0,208 0,04 Topuz dan Ozdemir, 2007 Cabai merah 1245 F1 ( C. annuum ) 0,271 0,1234 0,024 Cabai merah Amazon F1 ( C. annuum ) 0,016 0,0001 0,0102 Cabai merah Serademre 8 ( C. annuum ) 0,1492 0,0725 0,0158 Cabai merah Kusak 295 F1 ( C. annuum ) 0,011 0,0017 0,0001 Maserasi Etanol Perendaman dilakukan hingga warna cabai memudar Habanero belum matang 1,071 0,357 - Tundis dkk., 2009 Habanero matang 4,363 2,498 - Maserasi Etanol T = 80 °C selama 4 jam dengan pengadukan tiap 1 jam Hot chili ( C. annuum L.) 4,249 4,4822 - Ahmed dkk., 2011 Cabai merah 0,3093 0,2382 - Cabai hijau 0,1385 0,1464 - Maserasi Aseton Waktu 5 menit Scotch Bonnet (C. chinense ) 47,632 23,096 - Gahungu dkk., 2011 Maserasi Aseton T = 50 °C selama 30 menit dengan pengadukan Habanero emas (C. chinense ) 8,175 1,389 0,144 Giuffrida dkk., 2013 Habanero jingga 10,156 4,273 0,433 Habanero merah 1 4,904 1,359 0,1 Habanero merah 2 38,871 14,132 1,102
Habanero coklat 19,454 3,092 0,608 Habanero putih 8,248 1,859 0,34 CAP : Capsaicin, DCH : Dihidrocapsaicin, n-DHC : Nordihidrocapsaicin.
Metode Pelarut Kondisi Jenis Cabai CAP (mg/g) DHC (mg/g) n-DHC (mg/g) Referensi Maserasi Aseton T = 50 °C selama 30 menit dengan pengadukan Scotch bonnet 5,961 2,331 0,068 Guiffrida dkk., 2013 Serrano ( C. annuum ) 0,707 0,527 0,112 Tabasco ( C. frutescens ) 0,917 0,351 0,066 Jalapeno ( C. annuum ) 1,101 0,843 0,18 Sinpenzon 0,716 0,308 0,078 Maserasi n -heksana Suhu ruang selama 5 hari Biquinho pepper ( C. chinense ) 0,132 0,018 - Martínez dkk., 2014 Metanol 0,025 0,0028 - Etanol 0,026 0,0022 - Aseton 0,14 0,0167 - Maserasi Etanol Suhu ruang Biquinho pepper ( C. chinense ) 0.026 0.0022 - Aguiar dkk., 2014 Aseton 0.14 0.0167 - n -heksana 0.132 0.018 - Metanol 0.025 0.0028 - Sokletasi Etanol Waktu 6 jam pada titik didih pelarut Biquinho pepper ( C. chinense ) 0.022 0.00170 - Aguiar dkk., 2014 Aseton 0.065 0.0063 - n -heksana 0.222 0.0275 - Metanol 0.020 0.0013 - Metode Pelarut Kondisi Jenis Cabai CAP (mg/g) DHC (mg/g) n-DHC (mg/g) Referensi

## Nur Hasanah, dkk. Akta Kimia Indonesia 7(1), 2022, 14-61
Sokletasi n -heksana Waktu 6 jam pada titik didih pelarut Biquinho pepper ( C. chinense ) 0,222 0,0275 - Martínez dkk., 2014 Metanol 0,020 0,0013 - Etanol 0,022 0,0017 - Aseton 0,065 0,0063 - Sokletasi Metanol Waktu 2 jam pada titik didih pelarut Trinidad scorpion moruga ( C. chinense ) 42,875 18,085 0,423 Bajerova dkk., 2015 Yellow bedder ( C. annuum ) 2,488 2,532 0,288 Sokletasi Metanol Waktu 2 jam pada titik didih pelarut Ring of Fire ( C. annuum ) 1,737 1,728 0,512 Bajerova dkk., 2015 Jamaican hot red ( C. chinense ) 2,078 1,169 0,204 Yellow habanero ( C. chinense ) 0,540 0,413 0,027 Tabasco ( C. frutescens ) 3,191 2,504 0,934 Chiltepi ( C. annuum ) 0,285 0,220 0,071 Bhut jolokia ( C. chinense ) 8,496 5,742 0,180 Trinidad scorpion moruga ( C. chinense ) 20,416 12,255 0,446 Metode Pelarut Kondisi Jenis Cabai CAP (mg/g) DHC (mg/g) n-DHC (mg/g) Referensi Fatalii red 10,643 3,063 0,097

## Nur Hasanah, dkk. Akta Kimia Indonesia 7(1), 2022, 14-61
( C. chinense ) Sokletasi n -heksana Titik didih pelarut Malagueta pepper ( C. frutescens ) 1,88 1,05 0,09 Santos dkk., 2015 Sokletasi n -heksana Waktu 8 jam Jalapeno ( C. annuum ) 2,495 1,016 - Bae dkk., 2012 Etil asetat 0,692 0,344 - Aseton 0,354 0,171 - Metanol 0,0186 - - Metanol:air (80:20, v/v) - - - Sokletasi n -heksana Waktu 6 jam (triplet) Malagueta pepper ( C. frutescens ) 1,05 1,88 - Martínez dkk., 2014 Diklorometana 0,97 1,76 - Etil eter 1,22 2,27 - Etil asetat 1,20 2,16 - Sokletasi n -heksana Suhu disesuaikan dengan titik didih pelarut Dedo de moça ( C. bacctum L . ) 1,44 0,6 0,09 Dias dkk., 2017 Etil asetat 1,77 0,73 0,11 Etanol 0,33 0,14 0,02 Metanol 0,18 0,07 0,01 Shaker flask Asetonitril T = 80 °C selama 4 jam Piquin kering ( C. annuum ) 17,093 2,18 - Yahia dan Padilla, 1998 Piquin beku ( C. annuum ) 8,790 5,563 - Piquin segar ( C. annuum ) 1,2938 6,26 - Metode Pelarut Kondisi Jenis Cabai CAP (mg/g) DHC (mg/g) n-DHC (mg/g) Referensi Shaker flask Aseton Suhu ruang selama 24 jam Cabai besar ( C. annuum ) 0,31 0,19 - Orsat, 2003

## Nur Hasanah, dkk. Akta Kimia Indonesia 7(1), 2022, 14-61
Refluks Aseton Waktu 2 jam Cabai besar ( C. annuum ) 0,22 0,14 - Microwave Etanol T = 125°C dengan power sebesar 500 W selama 5 menit Cayenne pepper ( C. frutescens ) long marble pepper ( C. annuum )
round marble pepper ( C. annuum ) 0,081- 0,138 0,041-0,082 - Palma dkk., 2006 Ultrasonik Metanol Waktu 10 menit C. frutescens ( cayenne ) 0,137 0,0814 - Palma dkk., 2008 Ultrasonik Etanol Power = 150 W, Waktu 10 menit Biquinho pepper ( C. chinense ) 0.045 0.0044 - Aguiar dkk., 2014 Aseton 0.177 0.020 - n -heksana 0.164 0.0215 - Metanol 0.025 0.0023 - Ultrasonik Metanol Suhu ruang selama 10 menit Cumari do Pará ( C. chinense ) 0,634 0,131 - Godoy dkk., 2014 Ultrasonik n -heksana Waktu 10 menit pada frekuensi 20 kHz Biquinho pepper ( C. chinense ) 0,164 0,0215 - Martínez dkk., 2014 Metanol 0,025 0,0023 - Ultrasonik Etanol Waktu 10 menit pada frekuensi 20 kHz Biquinho pepper ( C. chinense ) 0,045 0,0044 - Martínez dkk., 2014 Aseton 0,177 0,0200 - Ultrasonik Metanol suhu 50°C, power 360 W, selama15 menit Cayenne ( C. annuum L.) 0,0917 0,0686 - Palma, 2014 Metode Pelarut Kondisi Jenis Cabai CAP (mg/g) DHC (mg/g) n-DHC (mg/g) Referensi Shaker dan ultrasonik Etanol S haker selama 15 menit pada suhu 25°C dan ultrasonik selama Habanero chili ( C. chinense ) 10,081 4,430 - Deulund dan Mouritsen, 2016

## Nur Hasanah, dkk. Akta Kimia Indonesia 7(1), 2022, 14-61
30 menit pada suhu ruang
Ultrasonik
Metanol T = 50 °C Intensitas = 300 W/cm 2 Dedo de moça ( C. baccatum L.) 0,12 0,05 0,01 Dias dkk., 2017 T = 60 °C Intensitas = 150 W/cm 2 0,12 0,05 0,01 Etanol T = 50 °C Intensitas = 300 W/cm 2 0,13 0,05 0,01 T = 60 °C Intensitas = 150 W/cm 2 0,17 0,07 0,01 SFE CO 2 T = 55 °C dan P = 200 bar Paprika ( C. annuum L.) 3,081 2,754 0,568 Daood dkk., 2002 T = 25 °C dan P = 400 bar 2,333 2,208 0,450 SFE CO 2 T = 60 °C dan P = 100 bar Cabai besar ( C. annuum ) 0,924 0,844 0,1441 Knez dkk., 2004 Metode Pelarut Kondisi Jenis Cabai CAP (mg/g) DHC (mg/g) n-DHC (mg/g) Referensi SFE CO 2 T = 40°C dan P = 15 Mpa selama 90 menit Biquinho pepper ( C. chinense ) 0,3 0,075 - Martínez dkk., 2014 T = 50°C dan P =  15 Mpa selama 90 menit 0,22 0,042 - SFE CO 2 T = 40°C dan P = 25 Mpa selama 120 menit Dedo de moça pepper 0,88 0,37 - Martínez dkk., 2016

## Nur Hasanah, dkk. Akta Kimia Indonesia 7(1), 2022, 14-61
( C. baccatum L. var. Pendulum ) SFE CO 2 T = 50±3 °C P = 15±0,5 Mpa Malagueta pepper ( C. frutescens ) 1,83 1,00 0,07 Santos dkk., 2015 Subkritikal Propana T = 25 °C dan P = 50 bar Paprika ( C. annuum L.) 0,306 0,304 0,028 Daood dkk., 2002 T = 25 °C dan P = 80 bar 0,335 0,323 0,031 Subkritikal Air T = 200 °C P = 20 Mpa Trinidad scorpion moruga ( C. chinense ) 46,451 15,538 0,295 Bajerova dkk., 2015 Yellow bedder ( C. annuum ) 3,964 3,1 0,501 Ring of Fire ( C. annuum ) 1,855 1,816 0,608 Jamaican hot red ( C. chinense ) 2,55 1,345 0,259 Metode Pelarut Kondisi Jenis Cabai CAP (mg/g) DHC (mg/g) n-DHC (mg/g) Referensi Yellow habanero ( C. chinense ) 0,739 0,506 0,024 Tabasco ( C. frutescens ) 3,936 2,703 1,073 Chiltepi ( C. annuum ) 0,308 0,224 0,08 Bhut jolokia ( C. chinense ) 9,127 4,831 0,219

## Nur Hasanah, dkk. Akta Kimia Indonesia 7(1), 2022, 14-61
Trinidad scorpion
moruga ( C. chinense ) 20,264 10,565 0,52 Fatalii red ( C. chinense ) 12,394 3,116 0,137 Tabel 3 Pengaruh Metode Ekstraksi, Kondisi Ekstraksi, Jenis Pelarut dan Jenis Cabai terhadap Kadar Metabolit Sekunder Lain pada Cabai
Metode Pelarut Kondisi Jenis Cabai Fenolik (mg/g) Flavonoid (mg/g) Karotenoid (mg/g) Referensi Maserasi Etanol Perendaman dilakukan hingga warna cabai memudar Habanero belum matang 7,82 1,38 0,627 Tundis dkk., 2009 Habanero matang 7,59 0,45 3,62 Maserasi Etanol Ekstrak etanol dilarutkan dalam MeOH/H 2 O (8:2) dan diekstrak dengan n - C. annuum var. acuminatum medium 8,437 0,0213 3,247 Loizzo dkk., 2012 C. annuum var. acuminatum besar 7,487 0,1853 1,917
heksana Metode Pelarut Kondisi Jenis Cabai Vitamin A (µg/g) Asam askorbat (mg/g) Karotenoid (mg/g) Referensi Maserasi Aseton Perendaman hingga warna menghilang Cabai merah 730 F1 ( C. annuum ) 2.188 0,631 2,39 Topuz dan Ozdemir, 2007 Cabai merah 1245 F1 ( C. annuum ) 2,43 0,649 2,31 Cabai merah Amazon F1 ( C. annuum ) 1,859 0,152 1,81 Cabai merah Serademre 8 ( C. annuum ) 1,592 0,575 1,68 Cabai merah  Kusak 295 F1 ( C. annuum ) 1,481 0,256 1,44 Maserasi Aseton T pelarut = 5 °C Guajillo ( C. annuum ) - - 3,406 Moreno dkk., 2012 Pasilla ( C. annuum ) - - 2,933 Ancho ( C. annuum ) - - 1,437 Shaker flash Etanol Waktu 48 jam C. annuum var. abbreviatum 236,08 1605,36 619,96 Afolayan dan Olatunji, 2019 C. annuum var. acuminatum 200,7 1223,71 629,22 C. annuum var. grossum 272,47 1630,53 709,99 C. frutescens var. baccatum 221,21 867,241 616,81
Air Waktu 48 jam C. annuum var. abbreviatum 70,11 373,14 444,95 C. annuum var. acuminatum 75,22 386,7 431,07 C. annuum var. grossum 57,36 317,73 431,07 C. frutescens var. baccatum 90,86 543,09 444,32 Metode Pelarut Kondisi Jenis Cabai Kuarsetin (µg/g) Luteolin (µg/g) Kaempferol (µg/g) Referensi Maserasi Etanol Ekstrak etanol dilarutkan dalam MeOH/H 2 O (8:2) dan diekstrak dengan n - heksana C. annuum var. acuminatum medium 5,6 8,9 6,8 Loizzo dkk., 2012 C. annuum var. acuminatum besar 68 87,6 29,7 Sokletasi n -heksana Waktu 8 jam Cayenne CA408 ( C. annuum ) TD TD TD Bae dkk., 2012 Etil asetat 1,9 2,4 TD Aseton 4 5,25 0,94 Metanol TD 26,9 TD Metanol:air (80:20, v/v) TD 2,33 TD n -heksana Cayenne Mesilla ( C. annuum ) TD TD TD Etil asetat 6,37 1,72 4,23 Aseton 4,2 4,56 0,27 Sokletasi Metanol Waktu 8 jam Cayenne Mesilla ( C. annuum ) 57,2 TD TD Bae dkk., 2012 Metanol:air (80:20, v/v) TD 3,92 TD

## Nur Hasanah, dkk. Akta Kimia Indonesia 7(1), 2022, 14-61
n -heksana Jalapeno Ixtapa ( C. annuum ) TD TD TD Etil asetat 2,9 TD 2,16 Aseton TD 3,86 4,72 Metanol TD TD TD Metanol:air (80:20, v/v) TD 1,2 0,87 n -heksana Serrano Tuxtlas ( C. annuum ) TD TD TD Etil asetat 24,3 1,27 15,4 Aseton 10,5 3,17 1,66 Metanol 17,8 41,5 TD Metanol:air (80:20, v/v) 1,16 4,88 TD Metode Pelarut Kondisi Jenis Cabai Violaxanthin (µg/g) β-cryptoxanthin (µg/g) β-karoten (µg/g) Referensi Maserasi Aseton Perendaman dilakukan hingga warna sampel menghilang Cabai merah 730 F1 ( C. annuum ) 101,1 154,3 120,3 Topuz dan Ozdemir, 2007 Cabai merah 1245 F1 ( C. annuum ) 89,3 165,5 124,5 Cabai merah Amazon F1 ( C. annuum ) 59,3 163 83,9 Cabai merah Serademre 8 ( C. annuum ) 64,3 115 69,5 Cabai merah  Kusak 295 F1 ( C. annuum ) 50,3 113,5 72,9
TD : Tidak Diketahui.

## Nur Hasanah, dkk. Akta Kimia Indonesia 7(1), 2022, 14-61
Tabel 4 . Pengaruh Variasi Pelarut terhadap Kadar Fitokimia Buah Cabai (Bae dkk., 2012) Jenis Cabai Pelarut Fenolik (µg/g) Flavonoid (µg/g) Karotenoid (µg/g) Capsaicinoid (µg/g) β-karoten (µg/g) Capsanthin (µg/g) Cayenne CA408 n-heksana 0 ND 448 83,8 299±0,67 150±1,72 Etil asetat 62,6±3,69 15,1±1,14 313 TD 223±0,57 90,4±2,33 Aseton 65,9±0,84 10,6±0,10 18,9 TD 13,5±0,94 5,36±0,09 Metanol 49±2,12 26,9±3,01 TD TD TD TD Metanol 80% 35,7±2,07 3,11±0,07 TD TD TD TD Ceyenne Mesilla n-heksana 0 ND 31,3 549 24,1±0,71 7,16±0,85 Etil asetat 51,6±2,0 12,3±0,53 11,7 18 8,40±0,29 3,27±0,05 Aseton 28,2±1,12 11,2±0,42 7,25 7,44 6,07±0,89 1,18±0,12 Metanol 30,3±2,40 57,2±3,74 TD TD TD TD Metanol 80% 24,8±1,66 3,92±0,06 TD TD TD TD Jalapeno Ixtapa n-heksana 0 ND 470 3512 273±22,6 196±14,9 Etil asetat 36,4±1,97 5,06±0,05 327 1035 292±40,3 34,5±7,34 Aseton 23,4±1,39 10,6±0,44 6,28 526 3,26±0,57 3,02±0,04 Metanol 32,5±1,84 18,3±1,72 TD 18,6 TD TD

## Nur Hasanah, dkk. Akta Kimia Indonesia 7(1), 2022, 14-61
Jenis Cabai Pelarut Fenolik (µg/g) Flavonoid (µg/g) Karoten oid (µg/g) Capsaicinoid (µg/g) Β-karoten (µg/g) Capsanthin (µg/g) Metanol 80% 32,4±1,15 2,76±0,15 TD TD TD TD Serrano Tuxtlas n-heksana 0 ND 722 51,9 533±5,94 189±1,58 Etil asetat 68,9±3,69 41,0±0,84 100 11,4 35,1±0,96 65,0±4,83 Aseton 53,3±2,79 17,6±0,24 35,6 8,16 15,3±0,87 20,2±0,17 Metanol 30,9±2,64 59,2±7,05 TD TD TD TD Metanol 80% 29,3±2,92 9,82±0,22 TD TD TD TD Aseton 53.3 ± 2.79 17.6 ± 0.24 35.6 8.16 15.3 ± 0.87 20.2 ± 0.17 Metanol 30.9 ± 2.64 59.2 ± 7.05 TD TD TD TD Metanol 80% 29.3 ± 2.92 9.82 ± 0.22 TD TD TD TD TD : Tidak Diketahui.

## Nur Hasanah, dkk. Akta Kimia Indonesia 7(1), 2022, 14-61

## 3.6. Biaoktivitas Cabai
Buah  cabai  telah  dilaporkan  pada
beberapa penelitian, memiliki banyak bioaktivitas yang meliputi antioksidan,
antimikrobial, antikanker, antidiabetes,
antiinflamasi  dan  analgesik.  Bioaktivitas  ini umumnya bergantung pada senyawa metabolit  sekunder  yang  ada  pada  buah cabai.  Pada  pembahasan  sebelumnya  telah dijelaskan  bahwa  buah  cabai  ini  memiliki metabolit sekunder yang terdiri dari kelompok  capsaicinoid  seperti  capsaicin (Popelka dkk., 2017), karotenoid (O’Connell dkk.,  2010),  fenolik  (Zhuang  dkk.,  2012), flavonoid (Bae dkk., 2012), vitamin
(Palevitch  dan  Craker,  1995)  dan  senyawa volatil  seperti  kelompok  terpenoid  (Gogus dkk., 2015)..
Kelompok senyawa fenolik,
flavonoid, karotenoid dan vitamin pada buah cabai  memberikan  peran  penting  dalam bioaktivitasnya  sebagai  antioksidan  dan antikanker  (Grassi  dkk.,  2010;  Bosland  dan Votava,  2012;  Alejo  dan  Rivera.,  2020).
Metabolit sekunder pada cabai tersebut dapat memperlambat  atau  menghambat  reaksi oksidasi  oleh  spesi  oksigen  redikal  yang reaktif  sehingga  kerusakan  sel  akibat  stres oksidatif  dapat  berkurang  (Cirulis  dkk., 2013).  Selain  itu,  cabai  dapat  menurunkan proliferasi  atau  pertumbuhan  sel  kanker  dan
menaikkan  proses  apoptosis  atau  kematian sel kanker tanpa mengganggu sel normal. Hal inilah  yang  menyebabkan  buah  cabai  dapat berperan  sebagai  obat  antikanker  alternatif (Lin dkk., 2013; Lebel dkk., 2014).
Sebagai  pereda  nyeri  atau  analgesik, kelompok  capsaicinoid  terutama  capsaicin dilaporkan  memberikan  berperan  penting pada  buah  cabai.  Mekanisme  penurunan nyeri  oleh  capsaicin  terjadi  saat  capsaicin mengaktifkan  reseptor  TRPV1  ( Transient Receptor  Potential  Vanilloid 1 ) pada  tubuh.
Reseptor TRPV1 ini berperan dalam mendeteksi  dan  mengatur  suhu  tubuh. Apabila  capsaicin  terkena  kulit  atau  masuk dalam  tubuh  maka  capsaicin  ini  akan berikatan  dengan  reseptor  TRPV1  ini  dan mengaktifkannya. Pengaktifan reseptor TVRP1  ini  akan  menginduksi  serat  deta-A dan serat C pada nosiseptor untuk mengirimkan sinyal ke otak melalui sumsum tulang  belakang.  Otak  akan  mengolah  sinyal tersebut  dan  memberikan  respon  berupa sensasi  hangat  hingga  panas.  Pada  proses pengaktifan  inilah,  sensitivitas  kulit  maupun tubuh  terhadap  sinyal  berbahaya  dari  luar akan  menurun.  Hal  ini  dikarenakan  terjadi defungsionalisasi  sementara  serat  nosiseptor dalam  mengirimkan  sinyal  ke  otak  sehingga proses  pengangkutan  dan  pengolahan  sinyal

## Nur Hasanah, dkk. Akta Kimia Indonesia 7(1), 2022, 14-61
bahaya  menjadi  terhambat.  Akibatnya,  rasa nyeri  pada  daerah  yang  mengalami  cidera atau trauma akan berkurang selama capsaicin masih mengaktifkan reseptor TRPV1 tersebut  (Anand  dan  Bley,  2011;  Chung  dan Campbel, 2016).
Terpenoid, capsaicin dan
dihidrocpasaicin dilaporkan berperan penting dalam  menghambat  pertumbuhan  mikroba (Nascimento  dkk.,  2014;  Lai  dkk.,  2019).
Mekanisme  antimikrobial  oleh  metabolit
sekunder  pada  buah  cabai  diketahui  dengan cara  mengganggu  proses  sintesis  membran sel  bakteri  sehingga  sifat  membran  sel menjadi permeabel dan menyebabkan sitoplasma  mudah  untuk  keluar  dari  sel. Karena  hal  ini,  mikroba  menjadi  tidak  dapat bertahan  hidup  (Adaszek  dkk.,  2019). Ringkasan  bioaktivitas  buah  cabai  pada beberapa  penelitian,  ditunjukkan  pada  Tabel 5 dan Gambar 3.
Gambar 3. Diagram Senyawa dan Bioaktivitas Buah Cabai

## Nur Hasanah, dkk. Akta Kimia Indonesia 7(1), 2022, 14-61
Tabel 5 . Bioaktivitas pada Ekstrak dan Senyawa Hasil Isolasi dari Buah Cabai

## ANTIMIKROBIAL
Jenis Sampel Metode Hasil Referensi Buah C. frutescens Liquid dilution method Well diffusion method Hasil  pengujian: ekstrak  air  buah  cabai  dapat  menghambat  pertumbuhan
Aspergillus niger , Aspergillus flavus dan Rhipus sp. dengan % penghambatan berturut  turut  sebesar  88,3  ,  79,2  dan  77,2%  serta  MIC  sebesar  10,  5  dan  5 mg/mL.  Namun  penghambatan  oleh  ekstrak  air  cabai  masih  dibawah  indofil sebagai kontrol positif. Soumya dan Nair, 2012 Buah C. frutescens dan C. annuum Well diffusion method
Hasil pengujian: ekstrak air dan metanol dari kedua jenis cabai menunjukkan aktivitas  penghambatan  terhadap Staphylococcus  aureus , Salmonella
typhimurium dan Vibrio cholerae . Namun, ekstrak C. annuum menghasilkan penghambatan  lebih  baik  dibandingkan C.  frutescens .  Zona  penghambatan ekstrak  air  dan  metanol Capsicum  annuum diperoleh  sebesar  14  dan  16  mm untuk S.  aureus ,  11  dan  16  mm  untuk S.  typhimurium dan  16  dan  21  mm untuk V.  cholerae dengan  nilai  MIC  berturut-turut  sebesar  0,25  dan  0,2
mg/mL untuk V. cholerae , 0,5 mg/mL untuk S. aureus dan 0,5 mg/mL untuk S. typhimurium serta nilai MBC sebesar 1 mg/mL untuk V. cholerae, 2 mg/mL untuk S. aureus dan 2 mg/mL untuk S. typhimurium . Nevry dkk., 2012 Buah  paprika hijau ( C. annuum ) Disk diffusion method Hasil  pengujian: ekstrak  air/metanol  (25:75  v/v) Capsicum  annuum menunjukkan aktivitas penghambatan terhadap bakteri Staphylococcus aureus , Listeria  monocytogenes dan Enterococcus  hirae dengan  zona  penghambatan berturut-turut sebesar 8,5, 6,5 dan 5,25 mm. Mondello dkk., 2016

## Nur Hasanah, dkk. Akta Kimia Indonesia 7(1), 2022, 14-61

## ANTIMIKROBIAL
Jenis Sampel Metode Hasil Referensi Biji C. frutescens Agar well diffusion method Hasil  pengujian: ekstrak  n-heksana,  kloroform,  etil  asetat,  aseton  dan metanol C.  frutescens dapat  menghambat  pertumbuhan  bakteri Escherichia coli , Pseudomonas  aeruginosa , Klebsiella  pneumoniae ,  dan Bacillus  cereus
serta jamur Candida albicans dan Candida krusei dengan zona penghambatan berkisar 3,5 – 22 mm. Gurnani dkk., 2016 Buah C. frutescens dan C. annuum The broth microdilution  Hasil pengujian: ekstrak etanol dari buah C. frutescens dan C. annuum dapat menghambat  pertumuhan  bakteri  gram  positif Streptococcus  salivarius dan Streptococcus sobrinus dengan MIC sekitar 64-128 µg/mL. Kokoska dkk., 2015 Buah C. frutescens Agar well diffusion method Hasil  pengujian: ekstrak  air,  etanol  dan  aseton  dari  5  varietas C.  frutescens dapat  menghambat  pertumbuhan  bakteri S.  typhi,  E.  coli,  P.  aeruginosa,
Serratia marcescens , S. aureus, Enterococcus aerogenes dan Proteus vulgaris dengan zona penghambatan berkisar 10,33 – 32,66 mm dan nilai MIC sebesar 7,8 dan 37,5 mg/mL. Bello dkk., 2015 Buah cabai Cayenne ( C. frutescens ) Disc diffusion method Hasil  pengujian: ekstrak  air  menunjukkan  aktivitas  antimikroba  terhadap
Proteus  vulgaris , P.  aeruginosa , S.  aureus dan C.  albicans dengan  zona penghambatan  sebesar  8  mm  sedangkan  ekstrak  etanol C.  frutescens menunjukkan  aktivitas  antimikroba  terhadap E. coli, P.  vulgaris , P. aeruginosa , Bacillus subtilis , Bacillus megaterium , S. aureus dan C. albicans dengan zona penghambatan berkisar 8-9 mm. Keser dkk., 2018 Capsaicin dan dihidrocapsaicin dari C. frutescens Broth micro-dilution assay Hasil  pengujian: capsaicin  dan  dihidrocapsaicin  dari C.  frutescens menunjukkan aktivitas penghambatan terhadap bakteri Enterococcus faecalis ,
Bacillus subtillis dan Staphylococcus aureus . Penghambatan dari dihidrocapsaicin  diketahui  lebih  baik  dibandingkan  capsaicin  (MIC  berkisar 1,2-25 µg/mL) dengan nilai MIC berkisar 0,6 – 5 µg/mL. Nascimento dkk., 2014

## Nur Hasanah, dkk. Akta Kimia Indonesia 7(1), 2022, 14-61

## ANTIOKSIDAN
Jenis Sampel Metode Hasil Referensi Capsaicin dan dihidrocapsaicin dari cabai bhut jolokia in vitro LPO  (Lipid Preoxidation) inhibitory assays Hasil  pengujian: capsaicin  dan  dihidrocapsaicin  pada  konsentrasi  25 µg/mL menunjukkan penghambatan proses LPO dengan % penghambatan sebesar 32 dan  46%.  Penghambatan  proses  LPO  tersebut  diketahui  masih  tergolong penghambatan medium. Nair dan Liu, 2009 Buah Capsicum annuum DPPH dan ABTS Hasil  pengujian: ekstrak  etanol C.  annuum ukuran  medium  dan  besar  dapat menghambat  radikal  bebas  DPPH  dan  ABTS  dengan  nilai  IC 50 berturut-turut sebesar  85,3  dan  21,5  µg/mL  untuk C.  annuum ukuran  medium  serta  137,9 dan  16,4 µg/mL  untuk C.  annuum ukuran  besar.  Dari  data  tersebut  diketahui ekstrak  etanol C.  annuum lebih  berpotensi  menghambat  radikal  ABTS dibandingkan radikal DPPH. Loizzo dkk., 2012 Cabai guajillo ,
pasilla dan ancho ( C. annuum ) DPPH Hasil  pengujian: ketiga  ekstrak  aseton  cabai  memiliki  total  karotenoid masing-masing  sebesar  guajillo  3406  ±  4 μ g/g,  pasilla  2933  ±  1 μ g/g,  and ancho  1437  ±  6 μ g/g  berat  sampel  kering.  Karotenoid  ini  diketahui  sebagai kelompok  senyawa  yang  berperan  sebagai  agen  antioksidan  pada  tanaman cabai. Dari pengujian DPPH, persen penghambatan dari ekstrak cabai guajillo (24,2%) lebih tinggi dibandingkan dengan pasilla (15,6%) dan ancho (12,3%). Hal ini sesuai dengan data total karotenoid dari ketiga cabai. Morenodkk., 2012 Buah cabai ( C. frutescens dan C. annuum ) DPPH  dan reducing power assay Hasil  pengujian: ekstrak  etanol  dari  sembilan  cabai  ( C.  frutescens dan C. annuum )  menunjukkan  aktivitas  antioksidan  yang  baik  pada  metode  DPPH dengan nilai IC 50 sekitar 135,13-366,67 µg/mL, reducing power dengan nilai EC 50 sebesar  65,91-125,08  µg/mL.  Cabai  Fructus  capsici  merah  ( C.
frutescens )  diketahui  memiliki  kemampuan  penghambatan  DPPH  lebih  baik dibandingkan  cabai  lainnya  sedangkan  pada reducing  power  assay , Screw pepper hijau dilaporkan paling baik dalam mereduksi Fe 3+ menjadi Fe 2+ . Zhuang dkk., 2012

## Nur Hasanah, dkk. Akta Kimia Indonesia 7(1), 2022, 14-61

## ANTIOKSIDAN
Jenis Sampel Metode Hasil Referensi Buah C. frutescens Nitric  Oxide  (NO)  free radical scavenging assay Hasil pengujian: ekstrak metanol C. frutescens menunjukkan penghambatan radikal bebas NO pada konsentrasi 0,5, 0,25 dan 0,125 mg/mL. Khan dkk., 2014 C. annuum , C. baccatum, C. chacoense dan C. chinense DPPH dan ABTS Hasil  pengujian: 20  cultivar  dari  spesies C.  annuum menunjukkan penghambatan  terhadap  radikal  DPPH  dan  ABTS  dengan  nilai  IC 50 berkisar 180,7 – 1926,1 µg/mL dan 27,3 – 317,4 µg/mL. Loizzo dkk., 2015 Capsaicin DPPH dan ABTS Hasil  pengujian: capsaicin  menunjukkan  aktivitas  antioksidan  yang  baik terhadap  radikal  ABTS  dengan  nilai  EC 50 sebesar  187,7  µM  dan  TEAC sebesar  0,029  µg  Trolox/µg  capsaicin  dibandingkan  terhadap  radikal  DPPH (EC 50 = 1016 µM). Isidori dkk., 2019 Buah cabai kering ( C. annuum ) DPPH dan FRAP Hasil pengujian: ekstrak petroleum eter dari cabai kering dan cabai panggang dilaporkan  memiliki  aktivitas  penghambatan  terhadap  radikal  DPPH  dan FRAP dengan IC 50 masing –masing sebesar 0,51 dan 7,02 mg/g untuk cabai kering serta 1,89 dan 17,6 mg/g untuk cabai panggang. Songsin dkkk., 2019

## Nur Hasanah, dkk. Akta Kimia Indonesia 7(1), 2022, 14-61

## ANTIOKSIDAN
Jenis Sampel Metode Hasil Referensi Biji  dan  daging  buah cabai kulai 151 dan kulai 568 ( C. annuum )
Biji  dan  daging  buah cabai centil , bara dan
pelita ( C. frutescens ) ABTS dan FRAP
Hasil  pengujian: ekstrak  etanol  semua  sampel  menunjukkan  aktivitas antioksidan yang baik terhadap radikal ABTS dengan rentang nilai IC 50 sekitar 12,411-91,95  mg/mL  dan  ion  Fe 3+ dengan  nilai  FRAP  berkisar  1,203-3,058 mM  Fe 2+ /mg.  Namun  hasil  yang  didapatkan  oleh  semua  sampel  cabai  masih kurang  bagus  dibandingkan  dengan  trolox  sebagai  pembanding  dengan  nilai IC 50 ABTS sebesar 0,406 mg/mL dan nilai FRAP sebesar 4,294  mM Fe 2+ /mg. Selain  itu,  ekstrak  daging  buah  cabai bara diketahui  memiliki  kemampuan penghambatan  radikal  ABTS  dan  ion  Fe 3+ paling  kuat  dibandingkan  cabai lainnya  sedangkan  aktivitas  penghambatan  terendah  diperoleh  ekstrak  biji cabai kulai 568. Azlan dkk., 2020

## ANTIDIABETES
Jenis Sampel Metode Hasil Referensi Buah C.  annuum var.
acuminatum dan C.
annuum var. cerasiferum Penghambatan aktivitas α- amilase dan α-glukosidase assay Hasil  pengujian: fraksi  lipofilik  dari C.  annuum var. acuminatum dan C. annuum var. cerasiferum dapat menghambat aktivitas enzim α-amilase dengan IC 50 sebesar 6,9 dan 20,1 µg/mL berturut-turut. Penghambatan fraksi lipofilik ini diketahui lebih baik dibandingkan dengan akarbose sebagai kontrol positif (IC 50 =  50  µg/mL)  namun  fraksi  lipofilik  ini  tidak  menunjukkan penghambatan terhadap enzim  α-glukosidase. Tidak hanya itu, ekstrak etanol C.  annuum var. cerasiferum juga  menunjukkan  penghambatan  terhadap α- amilase dan α-glukosidase dengan IC 50 sebesar 256.8 dan 356.8 µg/mL. Tundis dkk., 2011

## Nur Hasanah, dkk. Akta Kimia Indonesia 7(1), 2022, 14-61

## ANTIOKSIDAN
Jenis Sampel Metode Hasil Referensi Buah cabai fiesta , Thai jingga, acuminatum dan cayenne jingga ( C. annuum ) Capsaicin dan dihidrocapsaicin Penghambatan aktivitas α- amilase dan α-glukosidase assay Hasil  pengujian: ekstrak  etanol  dari  tiga  cultivar  ( fiesta , orange  thai dan cayenne  golden )  spesies C.  annuum yang  belum  matang  lebih  signifikan menghambat aktivitas enzim α-amilase dan α-glukosidase dengan IC 50 masing masing  berkisar  47,8  –  129,6  µg/mL  dan  81,1  –  109,2  µg/mL.  Namun aktivitas penghambatan dari ekstrak etanol C.annuum masih tergolong dalam penghambatan  medium.  Hal  ini  karena  nilai  IC 50 dari  ekstrak  tersebut  masih diatas  IC 50 akarbose  (50  µg/mL  untuk  α-amilase  dan  35,3  µg/mL  untuk  α- glukosidase) sebagai kontrol positif
Hasil  pengujian  senyawa  murni: capsaicin  dan  dihidrocapsaicin menunjukkan penghambatan aktivitas enzim α-amilase dengan IC 50 sebesar 83 µg/mL  dan  92  µg/mL  namun  tidak  menunjukkan  penghambatan  pada  uji  α- glukosidase (IC 50 ˃500 µg/mL). Tundis dkk., 2013 Buah C. annuum Penghambatan aktivitas α- amilase dan α-glukosidase assay Hasil pengujian: fraksi aseton C. annuum dapat menghambat aktivitas enzim α-amilase  dan  α-glukosidase  lebih  baik  dibandingkan  fraksi  n-heksana,  etil asetat dan diklorometana dengan IC 50 sebesar 164,11 dan 65,11 µg/mL. Hasil identifikasi  fraksi  aseton C.  annuum dengan  GC-MS  menunjukkan  adanya senyawa  capsaicin,  dihidrocapsaicin,  eugenol, tridecanois  acid , phytol , kauran-16-ol dan 1,2-Benzenedicarboxylic acid,mono(2-ethylhexyl) ester . Islam dkk., 2017 Biji,  daging  buah  cabai kulai 151 dan kulai 568 ( C. annuum )
Biji dan daging buah cabai centil , bara dan pelita ( C. frutescens ) Penghambatan aktivitas  pankreas lipase Hasil  pengujian: daging  buah  cabai bara dapat  menghambat  aktivitas pankreas lipase leboh baik dibandingkan dengan ekstrak buah cabai kulai 568 (IC 50 =  5,030±0,47 µg/mL)  dan  biji cabai centil (10,97±2,38 µg/mL)  dengan IC 50 sebesar  4,839  ±0,57 µg/mL.  Namun  nilai  IC 50 dari  ketiga  sampel  masih berada  dibawah  orlistat  sebagai  kontrol  positif  (IC 50 =  2,619±1,16  µg/mL).
Orlistat  merupakan  obat  antidiabetes  komersial  yang  efisien  dalam menghambat enzim pankreas lipase.
Azlan dkk., 2020

## Nur Hasanah, dkk. Akta Kimia Indonesia 7(1), 2022, 14-61

## ANTIINFLAMASI
Jenis Sampel Metode Hasil Referensi Capsaicin Carrageenan-induced paw edema in rats Hasil  pengujian: penggunaan  kombinasi  capsaicin  dan  diklofenak  pada  uji inflamasi  pembengkakan  kaki  tikus  oleh  karagenan  menunjukkan  penurunan volume  bengkak  lebih  besar  dibandingkan  hanya  menggunakan  diklofenak. Penurunan  volume  tersebut  terjadi  selama  180  menit  dan  360  menit  setelah injeksi karegenan pada hewan uji. Yilmaz dkk., 2013 Capsaicin acetylsalicylic acid- induced gastritis model Hasil  pengujian: capsaicin  menunjukkan  penurunan  atau  penghambatan produksi  sitokin  proinflamasi  seperti  TFN-α,  IL-1β,  IL-6  dan  enzim cyclooxygenase -2  (COX-2)  yang  berperan  dalam  proses  inflamasi  pada  tikus uji  yang  dirangsang  dengan  asam  asetilsalisilat  dibandingkan  dengan  tikus sehat  sebegai  kontrol.  Tidak  hanya  itu,  capsaicin  juga  menunjukkan  efek proteksi terhadap kerusakan mukosa lambung atau tukak lambung pada tikus uji dengan % proteksi sebesar 61,18%. Borunda dkk., 2019 Daging buah dan plasenta cabai merah ( C.annuum ) Anti-inflammatory activity  in  RAW  264.7 cells Hasil  pengujian: ekstrak  metanol  daging  buah  dan  plasenta C.  annuum menunjukkan  penghambatan  produksi  NO  (Nitrogen  monoksida)  pada  sel RAW  264,7  yang  diinduksi  dengan  LPS  ( Lipopolysaccharide ).  NO    ini merupakan  respon  makrofag  terhadap  proses  inflamasi  pada  tubuh.  Produksi NO  yang  berlebihan  dapat  menyababkan penyakit  yang  berhubungan  dengan inflamasi. Penghambatan NO ini diketahui disebabkan oleh adanya capsaicin yang  terbukti  memiliki  potensi  sebagai  antiinflamasi.  Kadar  capsaicin  pada ekstrak daging buah dan plasenta ini diperoleh sebesar 9,05 dan 9,48 mg/g. Kang dan Chen, 2013 Buah cabai merah tanpa biji ( C.baccatum var. pendulum ) Pengukuran produksi nitrit oksida dan TNF-a oleh makrofag Carrageenan-induced
Hasil  pengujian: ekstrak  etanol,  diklorometana  dan  butanol C.  baccatum pada konsentrasi 300 µg/mL dapat menghambat produksi TNF-α dan NO pada makrofag  peritoneal  yang  dirangsang  dengan  LPS/IFN-γ  (interferon  gamma) dibandingkan dengan sel tanpa perlakuan. Tidak hanya itu, keempat ekstrak C. baccatum juga  dapat  menghambat  pembengkakan  pada  kaki  tikus  akibat
Romao dkk., 2016

## Nur Hasanah, dkk. Akta Kimia Indonesia 7(1), 2022, 14-61

## ANTIINFLAMASI
Jenis Sampel Metode Hasil Referensi peritonitis in mice injeksi karagenan dengan menurunkan jumlah neutrofil pada hewan uji. Besar %  penghambatan  bengkak  oleh  ekstrak  etanol,  diklorometana  dan  butanol berturut-turut sebesar 42,5, 39,5 dan 52,9% pada konsentrasi 300 mg/kg.

## ANTI-KANKER DAN ANTI-TUMOR
Jenis Sampel Metode Hasil Referensi Buah cabai C. chinense In-vitro pada sel HepG2 dengan  metode  MTT assay Lactate  dehydrogenase (LDH) assay Hasil  pengujian: ekstrak  asetonitril C.  chinense dapat  menekan keberlangsungan  hidup  sel  kanker  HepG2  sebesar  50%  pada  konsentrasi  50 µg/mL  dibandingkan  dengan  sel  kontrol  yang  mengalami  proliferasi (keberlangsungan  hidup  sel  =  100%).  Tidak  hanya  itu,  pemberian  ekstrak asetonitril dengan konsentrasi 50 µg/mL juga dapat menekan pelepasan enzim LDH  sebesar  57,95%  sedangkan  sel  kontrol  mengalami  peningakatan  kadar enzim LDH tersebut. Lebel dkk., 2014 Capsaicin In-vitro  pada  sel  kanker pankreas  PANC-1  dan SW1990  dengan  metode CCK assay Flow  Cytometry  Analysis of Apoptosis Hasil pengujian: capsaicin dapat menghambat pertumbuhan sel kanker sebesar 50% pada konsentrasi 200 µM untuk sel PANC-1 dan 150 µM untuk SW1990. Pemakaian capsaicin  ini  juga  meningkatkan  proses  apoptosis  sel  kanker  dengan  %kecepatan opoptosis pada sel PANC-1 dan SW1990 berturut-turut sebesar 34,36% dan 48,11% sedangkan sel kanker kontrol tanpa perlakukan memiliki laju apoptosis dibawah 10% saja.  Tidak  hanya  itu,  capsaicin  hingga  konsetrasi  300  µM  tidak  menyebabkan penurunan keberlangsungan hidup pada sel pankreas normal HPNE. Selanjutnya pada uji in-vivo, capsaicin menunjukkan potensi sebagai anti-tumor pada tikus uji dengan menurunkan  berat  dan  volume  tumor  setiap  pemberian  capsaicin  dengan  berbagai Lin dkk., 2013

## Nur Hasanah, dkk. Akta Kimia Indonesia 7(1), 2022, 14-61

## ANTIINFLAMASI
Jenis Sampel Metode Hasil Referensi In-vivo pada tikus uji konsentrasi.  Berat  dan  volume  tumor  terkecil  diperoleh  dari  penambahan  capsaicin pada dosis 5 mg/kg dengan berat dan volume tumor sebesar 0,37 g  dan 256,62 mm 3
yang  dibandingkan  dengan  grup  kontrol  tanpa  perlakuan  (berat  tumor  =  0,91  g  dan volume  tumor  =766,5  mm 3 ).  Selain  itu,  pemakaian  capsaicin  dengan  dosis  5  mg/kg
juga  dapat  memperpanjang  waktu  hidup  tikus  uji  dengan  waktu  hidup  rata-rata sebesar 56 hari sedangkan tikus kontrol hanya bertahan hingga 30 hari saja.
Capsaicin In-vitro pada sel kanker usus besar (HT-29 dan RKO) XTT proliferation assay Hasil  pengujian: pemakaian  capsaicin  dengan  dosis  200  µM  menunjukkan penurunan proses proliferasi dan keberlangsungan hidup sel kanker HT-29 dan RKO
setelah 24 jam perlakuan dengan jumlah sel kanker yang masih hidup sebesar 0,44 ×
10 6 /mL  untuk  sel  HT-29  dan  0,14 × 10 6 /mL  untuk  sel  RKO  sedangkan  jumlah  sel
kanker hidup pada kontrol diperoleh sebesar 1,39 dan 1,74 × 10 6 /mL. Bessler dan Djaldetti, 2016 Capsaicin In-vitro  pada  sel  kanker kandung kemih (5637 dan T24) dengan metode MTT assay In-vivo pada tikus Hasil pengujian: capsaicin dengan konsentrasi 300 µM menunjukkan penghambatan proses  proliferasi  dan  migrasi  sel  pada  sel  kanker  T24  dan  5637  setelah  48  jam perlakuan.  Selain  itu,  capsaicin  juga  dapat  menekan  pertumbuhan  tumor  pada  tikus uji  dengan  menurunkan  volume  tumor  pada  tikus  tumor  dengan  penambahan capsaicin.  Volume  tumor  pada  tikus+capsaicin  turun  hingga  dibawah  500  mm 3
sedangkan volume tikus kontrol berada dibawah 1000 mm 3 .
Qian dkk., 2016

## Nur Hasanah, dkk. Akta Kimia Indonesia 7(1), 2022, 14-61
*-*. Jenis Sampel Metode Hasil Referensi Cabai guajillo ( C. annuum ) Rangsangan  panas  dan bahan  kimia  dari hot plate dan  asam  asetat pada mencit albino Hasil pengujian: ekstrak buah cabai guajillo dapat menghambat nyeri akibat rangsangan asam asetat dengan persen penghambatan sebesar 56% pada dosis 5  mg/kg  berat  badan  mencit.  Penghambatan  nyeri  ini  ditunjukkan  dengan adanya  penurunan  geliat  akibat  pemberian  asam  asetat  pada  mencit.  Namun penghambatan  nyeri  oleh  cabai guajillo masih  di  bawah  iboprofen  (persen penghambatan = 62%). Selain itu, cabai guajillo juga dapat menurunkan nyeri akibat  rangsangan  panas  dari hot  plate dengan  meningkatkan  waktu  respon mencit  terhadap  rangsangan  panas  tersebut.  Pada  dosis  80  mg/kg,  ekstrak cabai guajillo menghasilkan  waktu  respon  sebesar  18  detik  pada  360  menit setelah pemberian ekstrak cabai tersebut. Morenodkk., 2012 Gel dan krim nanoemulsi capsaicin Rangsangan  panas  dari hot  plate pada  tikus albino Wistar Uji  iritasi  kulit  pada kelinci albino Hasil pengujian: hasil pengujian analgesik menunjukkan bahwa gel dan krim nanoemulsi  capsaicin  dapat  menghambat  rasa  nyeri  yang  diakibatkan  oleh rangsangan panas yang ditandai dengan meningkatnya waktu reaksi hewan uji terhadap  rangsangan  selama  pemakaian  0,  60  dan  120  menit  dibandingkan dengan  kontrol.  Tidak  hanya  itu,  gel  nanoemulsi  capsaicin  menunjukkan waktu  respon  tertinggi  dibandingkan  dengan  krim  nanoemulsi  capsaicin  dan krim komersial. Hal ini menunjukan bahwa penggunaan nanoemulsi capsaicin dalam  bentuk  gel  sebagai  obat  luar  lebih  efektif  untuk  meredakan  nyeri dibandingkan  dalam  bentuk  krim.  Selain  itu,  pengujian  iritasi  kulit  pada kelinci  albino  menunjukkan  bahwa  gel  dan  krim  nanoemulsi  capsaicin  tidak menimbulkan  bengkak  maupun  kemerahan  pada  kulit  hewan  uji  yang menandakan  nanoemulsi  capsaicin  ini  aman  untuk  digunakan  sebagai  obat luar. Amani dkk., 2019

## Nur Hasanah, dkk. Akta Kimia Indonesia 7(1), 2022, 14-61
*-*. Jenis Sampel Metode Hasil Referensi Krim capsaicin (8%) topikal Sampling pemakaian sampel  pada  penderita nyeri otot Hasil  pengujian: penggunaan  krim  capsaicin  topikal  jug  dapat  mengurangi level nyeri pada penderita nyeri otot selama 60 hari setelah penggunaan krim tersebut.  Penderita  nyeri  otot  ini  sebelumnya  dibagi  menjadi  dua  grup  yang terdiri dari grup nyeri otot ringan dan berat. Pada grup nyeri otot ringan, level nyeri  berkurang  dari  4,3  menjadi  1,7  selama  60  hari.  Selain  itu,  level  nyeri pada grup nyeri otot berat juga menurun dari skala 9,2 menjadi 8,7 selama 60 hari setelah penggunaan krim capsaicin tersebut Barros dkk., 2019 Capsacin topikal Sampling pemakaian sampel  pada  penderita nyeri  otot,  keseleo  dan luka memar Hasil  pengujian: Capsacin  topikal  ini  dapat menurunkan  level  nyeri  pada  penderita nyeri  otot,  keseleo  dan  luka  memar  dari  skala  7,5  menjadi  1,5  selama  72  jam sedangkan  piroxicam  topikal  hanya  menurunkan  level  nyeri  dari  skala  7,5  menjadi 4,5. Capsacin topikal juga menunjukkan 50% penurunan nyeri pada 60 subjek uji dari 69 orang tanpa menunjukkan perbedaan efek samping dengan piroxicam topikal. Kocak dkk., 2020 Gel capsaicin, gel diklofenak dan gel diklofenak dengan capsaicin Sampling pemakaian sampel  pada  penderita nyeri leher dan punggung Hasil pengujian: Setiap gel digunakan sebanyak 2 gram tiap dua kali sehari selama 5
hari.  Dari  hasil  pengujian,  gel  capsaicin  menunjukkan  aktivitas  analgesik  lebih  baik dibandingkan gel diklofenak sebagai obat analgesik luar dan gel campuran diklofenak dengan capsaicin pada penderita nyeri leher dan punggung.
Predel dkk., 2020

## Nur Hasanah, dkk. Akta Kimia Indonesia 7(1), 2022, 14-61
3.7 Kesimpulan
Buah cabai dilaporkan memiliki kelompok  senyawa  capsaicinoid,  karotenoid, fenolik,  flavonoid,  vitamin  dan  senyawa volatil  seperti  terpenoid  sebagai  metabolit sekunder.  Jenis  pelarut,  jenis  cabai,  metode dan  kondisi  ekstraksi  pada  buah  cabai, diketahui dapat mempengaruhi kadar metabolit  sekunder  pada  cabai  tersebut.
Selain  itu,  cabai  juga  diketahui  memiliki
bioaktivitas
sebagai antioksidan,
antimikrobial, antikanker, antidiabetes,
antiinflamasi dan analgesik. Bioaktivitas dari cabai  ini  telah  membuktikan  bahwa  cabai memiliki  potensi  sebagai  tanaman  obat  di bidang  farmakologi.  Penelitian  lebih  lanjut terkait  dosis  penggunaan  yang  tepat  dan keamanan  dari  cabai,  perlu  dilakukan  agar dapat memperkuat fakta tersebut.
Daftar Pustaka Adaszek,    L.,  Gadomska,  D.,  Mazurek,  L., Lyp,  P.,  Madany,  J.,  Winiarczyk,  S., (2019).  Properties  of  Capsaicin  and Its  Utility  in  Veterinary  and  Human Medicine. Research  in  Veterinary Science . 123, 14-19.
Afolayan,  A.J.,  Olatunji,  T.L.,  (2019).
Comparative  Quantitative  Study  on Phytochemical Contents and Antioxidant  Activities  of Capsicum
annuum L.  and Capsicum  frutescens
L. The Scientific World Journal 1–13.
Aguiar, A.C.D., Santos, P.D., Coutinho, J.P., Barbero, G.F., Godoy, H.T., Martinez, J., (2014). Supercriticalfluid Extraction and Low
Pressure  Extraction  of  Biquinho
Pepper  ( Capsicum  chinense ). LWT  – Food  and  Science  Technology .  59:
1239-1246.
Ahmed,  Y.B.H.,  Othman,  Z.A.A.,  Habila,
M.A., Ghafar, A.A., (2011). Determination  of  Capsaicin  and
Dihydrocapsaicin  in Capsicum Fruit Samples  using  High  Performance Liquid  Chromatography. Molecules 16, 8919–8929.
Alam,  M.A.,  Syazwanie,  N.F.,  Mahmod,
N.H.,  Badaluddin,  N.A.,  Mustafa, K.A.,  Alias,  N.,  Aslani,  F.,  Prodhan,
M.A., (2018). Evaluation of Antioxidant  Compounds,  Antioxidant Activities and Capsaicinoid
Compounds  of  Chili  ( Capsicum  sp. ) Germplasms  Available  in  Malaysia. Journal  of  Applied  Research  on Medicinal  and  Aromatic  Plants .  9,
46-54.
Alejo,  N.O.,  Rivera,  M.G.V.,  (2020).  Chili Pepper  Carotenoids:  Nutraceutical Properties and Mechanisms of Action. Molecules 25, 1–23.
Amani,  A.,  Faramarzi,  M.A.,  Khansari, M.G.,  Aghajani,  M.,  Esmaeli,  F.,
Ghiasi, Z., (2019). Enhancing Analgesic  and  Anti-Inflammatory
Effects  of  Capsaicin  When  Loaded Into  Olive  Oil  Nanoemulsion:  An  In Vivo  Study. International  Journal  of Pharmaceutics 559, 341–347.
Anand,  P.,  Bley,  K.,  (2011).  Topical
Capsaicin  For  Pain  Management: Therapeutic Potential and
Mechanisms  of  Action  of  The  New High-Concentration  Capsaicin  8%
Patch. British  Journal  of  Anaesthesia
107, 490–502.
Azlan,  A.,  Huei,  C.S.,  Ismail,  A.,  Shafie, N.H., Sultana, S., (2020). Antioxidant and  Anti-Obesity  Properties  of  Local Chilies Varieties in Malaysia. Journal of  Food  Science  and  Technology 57,
3677–3687.

## Nur Hasanah, dkk. Akta Kimia Indonesia 7(1), 2022, 14-61
Bae,  H.,  Jayaprakasha,  G.K.,  Jifon,  J.,  Patil,
B.S., (2012). Variation of Antioxidant
Activity and  The Levels  of  Bioactive Compounds in Lipophilic and
Hydrophilic Extracts from Hot Pepper ( Capsicum  spp. )  Cultivars. Food Chemistry . 134: 1912-1918.
Barros, G.A.M. de, Modolo, N.S.P., Salgado, M.H.,  Espinar,  F.O.,  Lara,  J.R., Romero, V., (2019). Capsaicin Topical Cream (8%) for The Treatment of Myofascial Pain
Syndrome. Revista  Brasileira  de Anestesiologia 5, 432–438.
Bello,  I.,  Boboye,  B.E.,  Akinyosoye,  F.A.,
(2015).  Phytochemical  Screening  and Antibacterial  Properties  of  Selected Nigerian  Long  Pepper  ( Capsicum frutescens) Fruits. African  Journal  of Microbiology  Research 9,  2067– 2078.
Bessler,  H.,  Djaldetti,  M.,  (2016).  Capsaicin
Modulates  The  Immune  Cross  Talk Between  Human  Mononuclears  And Cells  From  Two  Colon  Carcinoma Lines. Nutrition and Cancer 69, 1–7. Borunda,  J.A.,  Garcia,  A.S.,  Orozco,  L.S., Mercado,  M.V.-D.,  Rosales,  A.D.,
Ramos,  L.Z.,  Ríos,  A.M.,  Rodriguez, A.S., Mendivil, E.J., (2019). Capsaicin Induces A Protective Effect on  Gastric  Mucosa  Along  With Decreased Expression of Inflammatory Molecules in A Gastritis Model. Journal of Functional Foods 59, 345–351. Bosland, P.W., Votava, E.J., (2012). Peppers:Vegetable and Spice
Capsicums  2nd  edition .  London:
CABI.
Cirulis,  J.T,  Scott,  J.A.,  Ross.  G.M.,  (2013). Management  of  Oxidative  Stress  by Microalgae. Canadian  Journal  of Physiology  and  Pharmacology .  91: 15–21.
Chung,  M.-K.,  Campbell,  J.N.,  (2016).  Use of Capsaicin to Treat Pain:
Mechanistic and Therapeutic Considerations. Pharmaceuticals 9,
1–20.
Daood,  H.G.,  Illes,  V.,  Gnayfeed,  M.H.,
Meszaros,  B.,  Horvath,  G.,  Biacs, P.A.,  (2002).  Extraction  of  Pungent Spice Paprika by Supercritical Carbon Dioxide  and  Subcritical  Propane. Journal  of  Supercritical  Fluids 23, 143–152.
Dias,  A.L.B.,  Sergio,  C.SA.,  Santos,  P.,
Barbero, G.F., Rezende, C.A., \Martinez,  J.,  (2017).  Ultrasound- Assisted  Extraction  of  Bioactive Compounds  from  Dedo  De  Moça Pepper  ( Capsicum  baccatum  L. ): Effects  on  The  Vegetable  Matrix  and Mathematical  Modeling. Journal  of Food Engineering . 198: 36-44.
Duch, E.S., Moreno, L.L., Aguirre, J.T., Yah, A.R.C.,  Ceballos,  L.,  Gonzalez,  M., Pino,  J.,  (2007).  Characterization  of Total  Capsaicinoids,  Colour  and Volatile  Compounds  of  Habanero Chilli  Pepper  ( Capsicum  chinense Jack.)  cultivars  grown  in  Yucatan. Food Chemistry 104, 1682–1686. Gahungu,  A.,  Ruganintwali,  E.,  Karangwa,
E.,  Zhang,  Mukunzi,  D.,  (2011). Volatile Compounds and
Capsaicinoid  Content  of  Fresh  Hot Peppers  ( Capsicum  Chinense )  Scotch Bonnet Variety at Red Stage.
Advance Journal of Food Science and Technology 3, 211–218. Gaytan, V.G., Merino, F.C.G., Tellez, L.I.T., Gastillo,  G.A.B.,  Morales,  S.G., (2017). The Chilhuacle Chili
( Capsicum  annuum L.)  in  Mexico: Description  of  The  Variety,  Its Cultivation,  and  Uses. Hindawi  - International  Journal  of  Agronomy . 2017, 1-13.
Giuffrida,  D.,  Dugo,  P.,  Torre,  G.,  Bignardi, C., Cavazza, A., Corradini, C., Dugo, G.,  (2013).  Characterization  of  12 Capsicum  Varieties  by  Evaluation  of

## Nur Hasanah, dkk. Akta Kimia Indonesia 7(1), 2022, 14-61
Their Carotenoid Profile and Pungency Determination. Food Chemistry 140, 794–802.
Godoy,  H.T.,  Melo,  A.M.T.  de,  Coutinho,
J.P.,  Sganzerla,  M.,  (2014).  Fast Method  for  capsaicinoids  Analysis from Capsicum chinense Fruits. Food Research International 64, 718–725.
Gogus,  F.,  Ozel,  M.Z.,  Keskin,  H.,  Yanık,
D.K.,  Lewis,  A.C.,  (2015).  Volatiles of  Fresh  and  Commercial  Sweet  Red Pepper  Pastes:  Processing  Methods and  Microwave  Assisted  Extraction.
International Journal of Food Properties 18, 1625–1634.
Gosmann,  G.,  Oliveira,  J.R.  de,  Schapoval,
E.,  Miron,  D.,  Leonardi,  B.,  Zimmer, A.R.,  (2012).  Antioxidant  and  Anti- Inflammatory Properties of Capsicum baccatum :  from  Traditional  Use  To Scientific  Approach. Journal  of Ethnopharmacology 228–233.
Govindarajan,  V.S.,  Sathyanarayana,  M.N., (2009).  Capsicum  —  Production, Technology,  Chemistry,  and  Quality. Part  V.  Impact  on  Physiology, Pharmacology, Nutrition, and Metabolism;  Structure,  Pungency,
Pain,  and  Desensitization  Sequences.
Critical Reviews in Food Science and Nutrition 29, 435–474.
Grassi,  D.,  Desideri,  G.,  Ferri,  C.,  (2010).
Flavonoids: Antioxidants Against Atherosclerosis. Nutrients 2,  889– 902.
Gupta,  A.,  Naraniwal,  M.,  Kothari,  V., (2012).  Modern  Extraction  Methods for  Preparation  of  Bioactive  Plant Extracts. International  Journal  of
Applied and Natural Sciences
(IJANS) 1, 8–26.
Gurnani,  N.,  Gupta,  M.,  Shrivastava,  R., Mehta,  D.,  Mehta,  B.K.,  (2016).
Effect  of  Extraction  Methods  on Yield,  Phytochemical  Constituents, Antibacterial And Antifungal Activity of Capsicum  frutescens L. Indian
Journal  of  Natural  Products  and Resources 7, 32–39.
Guzmán,  I.,  Bosland,  P.W.,  (2017).  Sensory Properties  of  Chile  Pepper  Heat  and Its  Importance  to  Food  Quality  and Cultural  Preference. Appetite 117,
186–190.
Idrees,  S.,  Hanif,  M.A.,  Ayub,  M.A.,  Hanif,
A.,  Ansari,  T.M.,  (2020).  Medicinal Plants of South Asia. Elsevier. Islam, Md.S., Koorbanally, N.A., Mohammed, A., (2017). Anti-
Diabetic  Effect  of Capsicum  annuum
L. Fruit Acetone Fraction in A Type 2 Diabetes  Model  of  Rats. Acta
Poloniae Pharmaceutica-Drug
Research 74, 1767–1779.
Isidori,  M.,  Russo,  C.,  Piscitelli1,  C.,
Nugnes,  R.,  Orlo,  E.,  Lavorgna,  M., (2019).  Capsaicin  in  Hot  Chili Peppers:  In  Vitro  Evaluation  of  Its Antiradical, Antiproliferative and Apoptotic  Activities. Plant Foods  for Human Nutrition 74, 164–170.
Jarret,  R.L.,  Batista,  F.R.D.C.,  Berke,  T., Chou,  Y.Y.,  Kemp,  A.H.,  Alejo, N.O.,  Tripodi,  P.,  Veres,  A.,  Garcia, C.C., Csillery, G., Huang, Y.K., Kiss, E., Kovacs, Z., Kondrak, M.,
Rodriguez, M.L.A., Scaldaffero,
M.A.,  Szoke,  A.,  (2019). Capsicum - an  abbreviated  compendium. Journal of the American Society for Holticultural Science . 144(1), 3-22. Junior, V.F.V., Wiedemann, L.S.M., Antonio,  A.S.,  (2018).  The  Genus Capsicum:  A  Phytochemical  Review of  Bioactive  Secondary  Metabolites. Royal  Society  of  Chemistry  Advances
8, 25767–25784.
Kang,  Y.-H.,  Chen,  L.,  (2013).  Anti- Inflammatory and Antioxidant Activities  of  Red  Pepper  ( Capsicum annuum L.) Stalk Extracts: Comparison  of  Pericarp  and  Placenta Extracts. Journal  Of  Functional Foods 5, 1724–1731.

## Nur Hasanah, dkk. Akta Kimia Indonesia 7(1), 2022, 14-61
Kehie,  M.,  Kumaria,  S.,  Tandon,  P.,
Ramchiary, N., (2015). Biotechnological  Advances  on  In Vitro  Capsaicinoids  Biosynthesis  in
Capsicum : A Review. Phytochemistry Review 14, 189–201.
Keser,  S.,  Kaygili,  O.,  Keser,  F.,  Tekin,  S., Yilmaz,  Ö.,  Demir,  E.,  Kirbag,  S., Sandal,  S.,  (2018).  Phytochemical
Composition,
Antiradical,
Antiproliferative  and  Antimicrobial
Activities  of Capsicum  frutescens L. Analytical  Chemistry  Letters 8,  642– 652.
Khan,  I.,  Ahmad,  H.,  Ahmad,  B.,  (2014). Anti-Glycationand Anti-Oxidation
Properties  of Capsicum  frutescens and Curcuma  longa Fruits:  Possible Role  in  Prevention  of  Diabetic Complication. Pakistan J ournal  of Pharmaceutical  Sciences 27,  1359– 1362.
Knez,  Z.,  Weinreich,  B.,  Skerget,  M., Uzunalic,  A.P.,  (2004).  Extraction  of Chilli  Pepper  (var.  Byedige)  with supercritical  CO 2 :  Effect  of  Pressure and Temperature on Capsaicinoid and Colour  Extraction  Efficiency. Food Chemistry 87, 51–58.
Kocak,  A.O.,  Dogruyol,  S.,  Akbas,  I., Menekse,  T.S.,  Gur,  S.T.A.,  Kocak, M.B.,  Cekmen,  B.,  Orun,  S.,  Cakir, Z.,  (2020).  Comparison  of  Topical
Capsaicin  and  Topical  Piroxicamin The  Treatment  of  Acute  Trauma- Induced Pain: A Randomized Double- Blind  Trial. American  Journal  of Emergency Medicine 38, 1767–1771. Kokoska, L., Pilna, J., Vlkova, E., Krofta, K.,
Nesvadba,  V.,  Rada,  V.,  (2015).  In Vitro  Growth-Inhibitory  Effect  of Ethanol GRAS Plant and Supercritical  CO 2 Hop  Extracts  on Planktonic Cultures of Oral Pathogenic Microorganisms. Fitoterapia 105, 260–268.
Korkmaz  A,  Atasoy  A  F,  dan  Hayaloglu  A A.  (2021).  The  Effects  of  Production Methods on The Color Characteristics,  Capsaicinoid  Content and  Antioxidant  Capacity  Of  Pepper Spices  ( C.  annuum L.). LWT  -  Food Science and Technology . 341(2), 1-8. Lai,  K.-S.,  Lim,  S.-H.E.,  Abushelaibi,  A., Chong,  C.-W.,  Chong,  C.-M.,  Song, A.A.-L.,  Moo,  C.-L.,  Yang,  S.-K., Mahizan,  N.A.,  (2019).  Terpene
Derivatives  as  a  Potential  Agent against Antimicrobial Resistance (AMR)  Pathogens. Molecules 24,  1– 21.
Lebel,  L.A.,  Saravanan,  S.,  Raj,  J.P.P.,
Amruthraj,  N.J.,  (2014).  In  Vitro Studies  on  Anticancer  Activity  of Capsaicinoids from Capsicum chinense against Human Hepatocellular Carcinoma Cells.
International  Journal  of  Pharmacy and Pharmaceutical Sciences 6, 254–
258.
Li, Y.-J., Peng, J., Luo, X.-J., (2011). Recent
Advances in The Study on Capsaicinoids and Capsinoids.
European  Journal  of  Pharmacology 1–7.
Lin,  S.,  Zhang,  J.,  Chen,  H.,  Chen,  K.,  Lai,
F., Luo, J., Wang, Z., Bu, H., Zhang, R.,  Li,  H.,  Tong,  H.,  (2013). Involvement of Endoplasmic Reticulum Stress in Capsaicin- Induced Apoptosis of Human Pancreatic  Cancer  Cells. Evidence- Based Complementary and Alternative Medicine 1–12.
Loizzo,  M.R.,  Pugliese,  A.,  Bonesi,  M., Menichini,  F.,  Tundis,  R.,  (2015). Evaluation  of  Chemical  Profile  and Antioxidant  Activity  of  Twenty Cultivars  from Capsicum  annuum , Capsicum  baccatum ,  A  Comparison
Between Fresh and Processed Peppers. Food Science and Technology 64, 623–631.

## Nur Hasanah, dkk. Akta Kimia Indonesia 7(1), 2022, 14-61
Loizzo,  M.R.,  Tundis,  R.,  Menichini,
Federica,  Bonesi,  M.,  Conforti,  F., Luca,  D.D.,  Menichini,  Francesco,
(2012).  Air-Dried Capsicum  annuum var. acuminatum Medium  and  Big:
Determination of Bioactive Constituents,  Antioxidant  Activity and Carbohydrate-Hydrolyzing Enzymes  Inhibition. Food  Research International 45, 170–176.
Martínez,  J.,  Godoy,  H.T.,  Barbero,  G.F.,
Coutinho, J.P., Santos, P. dos, Aguiar, A.C.  de,  (2014).  Supercritical  Fluid Extraction and Low Pressure Extraction of Biquinho Pepper ( Capsicum  chinense ). Food  Science and Technology 59, 1239–1246.
Martínez,  J.,  Santos,  P.,  Aguiar,  A.C.,
Barbero, G.F., Rezende, C.A., (2014). Supercritical Carbon Dioxide Extraction  of  Capsaicinoids  from Malagueta Pepper ( Capsicum frutescens L.)  assisted  by  ultrasound. Ultrasonics Sonochemistry 22, 78–88. Martínez,  J.,  Rezende,  C.A.,  Barbero,  G.F., Santos,  P.,  Sergio,  C.S.A.,  Dias, A.L.B.,  (2016).  Effect  of  Ultrasound on  The  Supercritical  CO 2 Extraction of  Bioactive  Compounds  from  Dedo
De Moça Pepper ( Capsicum baccatum L. var. pendulum). Ultrasonics  Sonochemistry 31,  284– 294.
McCarty, M.F., DiNicolantonio, J.J., O’Keefe, J.H., (2015). Capsaicin May Have Important Potential for Promoting  Vascular  and  Metabolic Health. Open Heart 2, 1–7.
Meghvansi, M.K., Siddiqui, S., Khan, Md.H., Gupta,  V.K.,  Vairale,  M.G.,  Gogoi, H.K.,  Singh,  L.,  (2010).  Naga  Chilli: A  Potential  Source  of  Capsaicinoids
with Broad-Spectrum Ethnopharmacological  Applications. Journal  of  Ethnopharmacology 132,
1–14.
Mercy,  R.,  Ekwere,  David,  E.,  (2016).
Extraction  and  Comparative  Analysis of  Moisture  and  Capsaicin  Contents of Capsicum Peppers. Journal of Pain
& Relief 5, 1–4.
Mondello,  L.,  Dugo,  P.,  Farnetti,  S.,  Riazi,
A., Giuffrida, D., Donato, P., Cacciola, F., Russo, M., Mokhtar, M., (2016). Capsaicinoids and
Carotenoids in Capsicum  annuum L.: Optimization of The Extraction Method,  Analytical  Characterization, and  Evaluation  of  its  Biological Properties. Food  Anal.  Methods 9, 1381–1390.
Nair, M.G., Liu, Y., (2009). Capsaicinoids in
the  Hottest  Pepper  Bhut  Jolokia  and its Antioxidant and Antiinflammatory Activities. Natural Product Communications 5, 91–94.
Nascimento,  P.L.A.,  Nascimento,  T.C.E.S.,
Ramos,  N.S.M.,  Silva,  G.R.,  Gomes, J.E.G., Falcão, R.E.A., Moreira, K.A.,
Porto,  A.L.F.,  Silva,  T.M.S.,  (2014). Quantification, Antioxidant and Antimicrobial  Activity  of  Phenolics Isolated  from  Different  Extracts  of Capsicum frutescens (Pimenta Malagueta). Molecules 19,  5434–
5447.
Nevry,  R.K.,  Kouassi,  K.C.,  Nanga,  Z.Y.,
Koussémon,  M.,  Loukou,  G.Y., (2012). Antibacterial Activity of Two Bell  Pepper  Extracts: Capsicum annuum L.  and Capsicum  frutescens .
International Journal of Food Properties 961–971.
O’Connell,  M.A.,  Bosland,  P.W.,  Guzman,
I.,  (2010).  Heat,  Color,  and  Flavor Compounds  in  Capsicum  Fruit,  in: The Biological Activity of Phytochemicals. Springer Science+Business  Media,  pp.  109– 126.
Orsat, V., Raghavan, G.S.V., Williams, O.J.,
Dai,  J.,  (2003).  Microwaveassisted Extraction  of  Capsaicinoids  from

## Nur Hasanah, dkk. Akta Kimia Indonesia 7(1), 2022, 14-61
Capsicum Fruit. Journal  of  Food Biochemistry 28, 113–122.
Moreno,  A.O.,  Ortega,  M.H.,  Navarro, M.D.H.,  Cevallos,  G.C.,  Alvarez, L.D.,  Mondragon,  H.N.,  (2012).
Antioxidant,  Antinociceptive,  and Anti-Inflammatory Effects of Carotenoids  Extracted  from  Dried Pepper ( Capsicum annuum L.). Journal Of Biomedicine And Biotechnology 1–10. Palevitch, D., Craker, L.E., (1995). Nutritional  and  Medical  Importance of  Red  Pepper  ( Capsicum spp.).
Journal of Herbs 3, 55–83.
Palma,  A.L.,  M.,  Barbero,  G.F.,  Barroso,
C.G., (2008). Ultrasound-assisted extraction  of  capsaicinoids  from peppers. Talanta 75, 1332–1337.
Palma,  M.,  Barbero,  G.F.,  Barroso,  C.G.,
(2006). Determination of Capsaicinoids in Peppers by Microwave-Assisted Extraction– High-Performance Liquid Chromatography  with  Fluorescence
Detection. Analytica  Chimica  Acta 578, 227–233.
Palma, M., Barbero, G.F., Ruiz, A.G., Liazid, A.,  Vera,  J.C.V.,  Barroso,  C.G.,
(2014).  Evolution  of  Total  And Individual  Capsaicinoids  in  Peppers during  Ripening  of  the  Cayenne Pepper  Plant  ( Capsicum  annuum L.). Food Chemistry 153, 200–206. Popelka,  P.,  Karel,  Š.,  P.,  J.,  P.,  R.,  (2017). Determination  of  Capsaicin  Content and  Pungency  Level  of  Different Fresh and Dried Chilli Peppers. Folia Veterinaria 61, 11–16.
Predel, H.-G., Bitoun, C.E., Peil, B., Weiser,
T.W., Lange, R., (2020). Efficacy and Safety of Diclofenac + Capsaicin Gel in  Patients  with  Acute  Back/Neck Pain:  A  Multicenter  Randomized Controlled  Study. Pain  and  Therapy
9, 279–296.
Qian,  K.,  Wang,  G.,  Cao,  R.,  Liu,  T.,  Qian, G.,  Guan,  X.,  Guo,  Z.,  Xiao,  Y.,
Wang, X., (2016). Capsaicin Suppresses Cell Proliferation, Induces Cell Cycle Arrest and ROS Production  in  Bladder  Cancer  Cells through FOXO3a-Mediated Pathways. Molecules 21, 1–15.
Rad,  M.S.,  Rad,  J.S.,  Yousaf,  Z.,  Nadeem,
M.,  Setzer,  W.N.,  Matthews,  K.R., Lalanne, G.M., Alarcón, K.R., Martorell,  M.,  Contreras,  M.  del  M.,
Álvarez,  A.J.H.,  Salehi,  B.,  (2018).
Potential  Phytopharmacy  and  Food Applications  of  Capsicum  spp.:  A
Comprehensive Review. Natural Product  Communications 13,  1543– 1556.
Romao,  P.R.T.,  Allemand,  A.,  Leonardi,
B.F.,  Zimmer,  A.R.,  Moreno,  S., Gosmann,  G.,  (2016).  Red  Pepper (Capsicum baccatum)
Extracts Present  Anti-Inflammatory  Effects  In Vivo  and  Inhibit  The  Production  of TNF-α  and  NO  In  Vitro. Journal  of Medicinal Food 19, 759–767. Sánchez, S.R.P., Estrada, T.G., Martın, F.C.,
Pacheco,  L.C.G.,  Tapia,  L.W.T., Pineda,  O.C.,  (2007).  Capsaicinoids
Quantification in Chili Peppers Cultivated  in  The  State  of  Yucatan, Mexico. Food  Chemistry 104,  1755– 1760.
Santos,  P.,  Aguiar,  A.C,  Barbero,  G.F,
Rezende,  C.A,  Martinez,  J.,  (2015). Supercritical Carbon Dioxide Extraction  of  Capsaicinoids  from Malagueta Pepper ( Capsicum frutescens  L. )  assisted  by  ultrasound.
Ultrasonics  Sonochemistry .  22:  78-
88.
Sharma,  G.J.,  Sanatombi,  K.,  (2008).
Capsaicin  Content  and  Pungency  of Different  Capsicum  spp.  Cultivars. Notulae Botanicae Horti Agrobotanici 36, 88–90.

## Nur Hasanah, dkk. Akta Kimia Indonesia 7(1), 2022, 14-61
Songsin,  P.,  Aree,  C.W.,  Srilaong,  V.,
Vichitsoonthonkul,  T.,  Muangkote, S.,  (2019).  Influence  of  Roasting  On Chemical  Profile,  Antioxidant  and Antibacterial  Activities  of  Dried Chili. Food  Sci  Biotechnol 28,  303–
310.
Soumya, S.L., Nair, B.R., (2012). Antifungal Efficacy  of Capsicum  frutescens L. Extracts  against  Some  Prevalent Fungal Strains Associated with Groundnut Storage. Journal of Agricultural Technology 8, 739–750. Spence, J.D., (2019). Chili Pepper
Consumption and Cardiovascular Mortality. Journal  of  The  American College  of  Cardiology 74,  3150– 3152.
Taiti, C., Costa, C., Migliori,  CA.,
Comparini, D., Figorilli, S., Mancuso,
S., (2019). Correlation between
Volatile Compounds and Spiciness in Domesticated  and  Wild  Fresh  Chili Peppers. Food and Bioprocess Technology . 12, 1366-1380.
Topuz,  A.,  Ozdemir,  F.,  (2007).  Assessment of  Carotenoids,  Capsaicinoids  and Ascorbic  Acid  Composition  of  Some Selected  Pepper  Cultivars  ( Capsicum annuum L.)  Grown  in  Turkey. Journal  of  Food  Composition  and Analysis 20, 596–602.
Tundis, R., Menichini, Federica, Bonesi, M.,
Loizzo,  M.R.,  Conforti,  F.,  Statti,  G., Cindio, B.D., Houghton, P.J., Menichini,  Francesco,  (2009).  The Influence  of  Fruit  Ripening  on  The Phytochemical Content And Biological  Activity  of Capsicum chinense Jacq.  cv  Habanero. Food Chemistry 114, 553–560.
Tundis,  R.,  Menichini,  F.,  Bonesi,  M., Conforti, F., Statti, G., Menichini, F., Loizzo,  M.R.,  (2013).  Antioxidant and  Hypoglycaemic  Activities  and Their  Relationship  to  Phytochemicals in Capsicum annuum cultivars during
Fruit  Development. LWT:  Food Science and Technology . 53, 370-377. Tundis, R., Menichini, Federica, Bonesi, M.,
Loizzo,  M.R.,  Conforti,  F.,  Statti,  G., Cindio, B.D., Houghton, P.J., Menichini,  Francesco,  (2009).  The Influence  of  Fruit  Ripening  on  The Phytochemical Content And
Biological  Activity  of Capsicum chinense Jacq.  cv  Habanero. Food Chemistry 114, 553–560.
Vassalotti,  G.,  Spina,  A.A.,  Badia,  A.D., (2017). Capsicum  annuum L.:  An Overview of Biological Activities and Potential  Nutraceutical  Properties  in Humans  and  Animals. Journal  of
Nutritional Ecology and Food
Research 4, 1–11.
Wijaya,  C.H.,  Harda,  M.,  Rana,  B.,  (2020). Diversity  and  Potency  of Capsicum spp. Grown in Indonesia, in: Capsicum. Intechopen, pp. 1–22.
Wormit,  A.,  Reimer,  J.J.,  Lemos,  V.C.,
(2019).  Review  Color  for  Life: Biosynthesis  and  Distribution  of Phenolic  Compounds  in  Pepper ( Capsicum  annuum ). Agriculture 81, 1–29.
Yilmaz,  E.D.,  Agis,  E.R.,  Uludag,  M.O.,
Ercan, N., (2013). The Anti-
Inflammatory  Effect  of  Diclofenac  is Considerably  Augmented  by  Topical Capsaicinoids-Containing  Patch  in Carrageenan-Induced Paw Oedema of Rat. Inflammopharmacol 21,  413– 419.
Zhang,  Q.,  Ye,  W.,  Lin,  L.,  (2018).
Techniques for Extraction and Isolation  of  Natural  Products:  A Comprehensive Review. Chinese Medicine 20, 1–26. Zhuang,  Y.,  Chen,  L.,  Sun,  L.,  Cao,  J., (2012).  Bioactive  Characteristics  and Antioxidant Activities of Nine
Peppers. Journal  Of  Functional
Foods 4, 331–338.