Agro Bali : Agricultural Journal                                                                                  e-ISSN 2655-853X Vol. 6 No. 2: 395-404, July 2023 https://doi.org/10.37637/ab.v6i2.1145

## Kelimpahan Jamur Non-Patogenik Pada Rhizosfer Daerah Endemik Patogen Magnaporthe grisea Penyebab Penyakit Blas Pada Tanaman Padi (Oryza sativa L.)

## Abundance of Non-Pathogenic Fungus in the Rhizosphere of Pathogenic Endemic Area Magnaporthe grisea Causes Blast Disease in Paddy (Oryza sativa L.)
Faqih Aulia Rahman 1 , Irda Safni 2♥ , Lisnawita 2
1 Agrotechnology Master Study Program, Faculty of Agriculture, Universitas Sumatera Utara, Indonesia
2 Agrotechnology Study Program, Faculty of Agriculture, Universitas Sumatera Utara, Indonesia
♥ Corresponding author email: irda@usu.ac.id
Article history : submitted: December 23, 2022; accepted: July 30, 2023; available online: July 31, 2023 Abstract.  This  study  aims  to  determine  the  abundance  of  fungi  found  in  the  rhizosphere  endemik  areas  of  the pathogen Magnaporthe grisea that causes blast disease in rice plants. This research is an initial study that began with conducting surveys at several endemik locations and determining the most appropriate location to be used as  a  soil  sampling  location  to  obtain  the  abundance  of  non-pathogenic  fungi.  From  the  3  locations  surveyed, including  Sukamandi  Hilir,  Sendayan  and  Secanggang,  it  was  found  that  the  Sendayan  area  was  the  most appropriate location to be used as a research location because there were symptoms of blast attack on rice plants throughout the rice cultivation area. After taking random samples specific to the location, purification was then carried out on the fungi present in the homogenized soil samples. Pathogenicity testing of the fungus was carried out  by  isolating  the  fungus  cultured  on  PDB  media  onto  potato  slices  that  had  been  surface  sterilized.  The conclusions  of  this  study  were  1)  There  were  13  fungal  isolates  at  the  study  site,  2)  After  microscopic  and macroscopic morphological identification, 3 fungal genera were found in the rhizosphere of blast endemik areas, including Aspergillus, Penicillium and Mucor, 3) Aspergillus is a fungus genus that Most abundant in rice blast endemik areas.
Keywords: abundance; blast; endemik; fungus; paddy
Abstrak .  Penelitian  ini  bertujuan  untuk  mengetahui  kelimpahan  jamur  yang  terdapat  pada  rhizosfer  daerah endemik  patogen Magnaporthe  grisea penyebab  penyakit  blas  pada  tanaman  padi.  Penelitian  ini  merupakan penelitian awal yang dimulai dengan melakukan kegiatan survei pada beberapa lokasi endemik dan menentukan lokasi yang paling tepat dijadikan sebagai lokasi pengambilan sampel tanah untuk mendapatkan kelimpahan jamur non-  patogenik.  Dari  3  lokasi  yang  dilakukan  survei,  diantaranya  Sukamandi  Hilir,  Sendayan  dan  Secanggang diketahui bahwa daerah Sendayan merupakan lokasi yang paling tepat untuk dijadikan sebagai lokasi penelitian sebab  terdapat  gejala  serangan  blas  pada  tanaman  padi  di  seluruh  lahan  budidaya  padi.  Setelah  dilakukan pengambilan sampel secara acak spesifik lokasi, selanjutnya dilakukan purifikasi pada jamur yang terdapat pada sampel tanah yang telah dihomogenkan. Pengujian patogenisitas pada jamur dilakukan dengan mengisolasi jamur yang  dibiakkan  pada  media  PDB  ke  irisan  kentang  yang  telah  dilakukan  sterilisasi  permukaan.  Kesimpulan penelitian ini adalah 1) Terdapat 13 isolat jamur pada lokasi penelitian, 2) Setelah dilakukan identifikasi secara morfologi mikroskopik dan makroskopik ditemukan 3 genus jamur yang terdapat pada rhizosfer daerah endemik blas,  diantaranya Aspergillus , Penicillium dan Mucor ,  3) Aspergillus merupakan  genus  jamur  yang  paling berlimpah pada daerah endemik blas padi.
Kata kunci: blas; endemi; jamur; kelimpahan; padi

## PENDAHULUAN
Padi  ( Oryza  sativa L.)  merupakan komoditas  tanaman  pangan  penghasil  beras memegang peranan penting dalam kehidupan ekonomi  Indonesia.  Beras  sangat  sulit digantikan oleh bahan pokok lainnya, seperti jagung,  umbi-umbian,  sagu  dan  sumber karbohidrat  lainnya,  sehingga  keberadaan beras  menjadi  prioritas  utama  masyarakat dalam memenuhi kebutuhan asupan karbohidrat yang  dapat mengenyangkan dan merupakan  sumber  karbohidrat  yang  mudah
diubah  menjadi  energi  (Wulansari  et  al., 2023).Padi sebagai dikonsumsi kurang lebih 90%  dari  keseluruhan  penduduk  Indonesia untuk makanan pokok sehari-hari (Donggulo et al., 2017).
Tanaman  padi  varietas  lokal  adalah varietas dari tanaman padi yang telah ada dan dibudidayakan  secara  turun-temurun  oleh petani  serta  menjadi  milik  masyarakat  dan dikuasai  negara.  Padi  varietas  lokal  lebih mampu beradaptasi terhadap perubahan iklim yang  terjadi,  dibandingkan  dengan  varietas
Agro Bali : Agricultural Journal                                                                                  e-ISSN 2655-853X Vol. 6 No. 2: 395-404, July 2023 https://doi.org/10.37637/ab.v6i2.1145
introduksi (Kurniawati, 2023).
Padi,  dalam  budidayanya  mengalami banyak faktor pembatas yang dapat menyebabkan  gagal  panen  (fuso)  (Lubis;, 2019).  Salah  satu  faktor  pembatas  produksi dalam budidaya tanaman padi adalah adanya penyakit  blas  yang  disebabkan  oleh  jamur Magnaporthe  grisea (Hebert)  Barr  Syn. Pyricularia  oryzae Cav.  yang  merupakan salah  satu  penyakit  penting  pada  tanaman padi di seluruh dunia. Di Indonesia, penyakit blas sudah menyebar di hampir semua sentra produksi padi di dataran rendah dan beririgasi di  seluruh  Indonesia.  Beberapa  areal persawahan  beririgasi  yang  dilaporkan terserang  penyakit  blas  adalah  Subang, Karawang  dan  Indramayu  di  Jawa  Barat; Pemalang,  Pekalongan,  Batang.  Demak  dan Jepara  (Jawa  Tengah),  dan  Lamongan, Jombang, Mojokerto, Pasuruan, Probolinggo dan Lumajang (Jawa Timur). Bukan hanya di Pulau  Jawa,  penyakit  blas  juga  menyerang padi  di  Lampung,  Sumatera  Selatan,  Jambi, Sumatera  Barat,  Sulawesi  Tengah,  Sulawesi Tenggara,  dan  Sulawesi  Selatan,  serta  di Kalimantan Tengah  dan Kalimantan Selatan (Suganda et al., 2016).
Agens pengendali hayati ( APH ) merupakan  organisme  meliputi  spesies, subspesies,  varietas,  semua  jenis  serangga, nematoda,  protozoa,  jamur,  bakteri,  virus, mikoplasma  serta  organisme  lainnya  yang dalam  semua  tahap  perkembangannya  dapat digunakan  untuk  keperluan  pengendalian hama  penyakit  tanaman  atau  organisme pengganggu dalam proses produksi, pengolahan  hasil  pertanian  dan  berbagai keperluan.  Agens  pengendali  hayati  ini disebut  patogen  yang  dapat  dikelompokkan menjadi 2 kelompok yaitu patogen serangga dan  agens  pengendali  patogen  tumbuhan (Darmawan, 2016).
Jamur pada tanah memiliki peranan yang berbeda. Jamur patogen tular tanah, memiliki kemampuan  menyebar  dan  persisten  dalam tanah  dan  menyebabkan  kebusukan  pada jaringan perakaran tanaman, rebah dan pada fase  tertentu  ( Sclerotinia  sclerotium )  dapat terpercik  di  udara  dan  menyebar  pada  daun
sehingga menyebabkan penyakit daun (Wu et al.,  2008).  Jamur  yang  berperan  sebagai pemacu  pertumbuhan  tanaman  yang  lebih dikenal  sebagai Plant  Growth  Promoting Fungi (PGPF) biasanya memiliki mekanisme kolonisasi pada rhizosfer sehingga mempersempit ruang dan dapat menghambat pertumbuhan  jamur  patogen  dalam  tanah (Supriyanto & Sulistyowati, 2011).
Jamur  antagonis  memiliki  mekanisme antagonis  diantaranya:  kompetisi,  antibiosis dan  parasitisme  (Prabawa,  2018).  Jamur antagonis yang memiliki mekanisme antibiosis dan parasitisme biasanya melakukan  pigmentasi  pada  bagian  koloni jamur  dan  melakukan  melanisasi  (zat  yang dihasilkan  jamur  untuk  menekan  dan mengendalikan  jamur  patogen)  dengan menghasilkan fenol (Eisenman & Casadevall, 2012).

## METODE
Penelitian dilaksanakan di Laboratorium Mikrobiologi  Fakultas  MIPA,  Universitas Negeri  Medan,  dan  Laboratorium  Hama Penyakit  Tumbuhan  Fakultas  Pertanian Universitas Muhammadiyah Sumatera Utara, Medan  Penelitian  ini  dilaksanakan  pada bulan Juni 2020 hingga November 2022.
Bahan  yang  digunakan  pada  penelitian ini  adalah  akuades,  media Potato  Dextrose Agar (PDA),  media  Potato  Dextrose  Broth (PDB), plastik wrap, aluminium foil, larutan clorox  3%,  alkohol  96%  dan  bahan pendukung lainnya.
Alat  yang  digunakan  adalah  magnetic stirrer, mikroskop compound , oven, desikator,  laminar  air  flow  (LAF),  pisau, pinset,  timbangan  analitik,  gelas  ukur, termometer  udara,  cawan  petri,  vortex, autoklaf dan alat pendukung lainnya.

## Penentuan Lokasi Pengambilan Sampel
Dilakukan  pemetaan  terhadap  lokasi secara historikal endemik patogen M. grisea . Lokasi  endemik  selanjutnya  disusutkan menjadi  3  yakni  Sukamandi  Hilir,  Deli Serdang; Sendayan, Langkat; dan, Secanggang,  Langkat.  Berdasarkan  survei
Agro Bali : Agricultural Journal                                                                                  e-ISSN 2655-853X Vol. 6 No. 2: 395-404, July 2023 https://doi.org/10.37637/ab.v6i2.1145
dan  waktu  pengambilan  sampel,  ditentukan bahwa  Sendayan  merupakan  lokasi  yang paling sesuai untuk dijadikan sebagai tempat pengambilan sampel, sebab memiliki karakteristik  sawah  yang  berada  dekat dengan laut dan pola pemupukan petani yang menggunakan  pupuk  N  dosis  tinggi.  Areal yang  dijadikan  sebagai  sampel  merupakan
areal dengan kategori serangan Magnaporthe grisea secara  menyeluruh.  Luasan  yang dijadikan sebagai lokasi pengambilan sampel tanah  adalah  20  rante  (402  m 2 )  yang selanjutnya  dilakukan  penggalian  pada rhizosfer pada 5 titik zigzag (pada areal) yang selanjutnya  dikompositkan  seperti  yang ditunjukkan pada (Gambar 1).
Gambar 1. Peta Lokasi Penelitian (Sendayan, Langkat). Sumber: Google Maps, 2022.

## Pembuatan PDA
Pembuatan media PDA ( Potato Dextrose Agar ) dilakukan secara konvensional dengan mengupas  dan  mengiris  tipis-tipis  kentang sebanyak  200  g,  yang  selanjutnya  direbus dengan aquades 1 L selama 15-20 menit pada isopad kemudian disaring untuk mendapatkan  filtrat  kentang  yang  kemudian dimasukkan sukrosa sebanyak 20 g dan agar 20  g  dan  dimasak  sampai  mendidih  dan diaduk  secara  merata.  Penambahan  kapsul hijau-putih  ( chloramphenicol )  sebanyak  1 kapsul  saat  media  sudah  berada  pada  suhu normal  dengan  tujuan  untuk  menghambat pertumbuhan  dan  mengendalikan  bakteri yang  akan  menyebabkan  kontaminasi  pada bakteri  (antibakteri).  Selanjutnya  media tersebut  diautoklaf  pada  suhu  121 0 C  selama 15 menit.

## Isolasi Jamur pada Rhizosfer
Isolasi  jamur  yang  terdapat  pada rhizosfer dimulai dengan mengambil sampel tanah pada luasan lahan sawah secara zigzag, pada  kedalaman  20  cm  –  30  cm.  Sampel tanah diambil dari 5 titik dan dikompositkan dengan  cara  mencampur  masing-masing sampel  pada  tiap  titik,  kemudian  diambil sebanyak 200 gr tanah yang telah
dikompositkan untuk dianalisis di laboratorium.
Selanjutnya, dilakukan pengenceran bertingkat  (Noerfitryani,  2018)  pada  semua sampel tanah.  Sampel tanah  diambil sebanyak  10  gr  dan  dimasukkan  ke  dalam Erlenmeyer  yang  berisi  90  ml  air  fisiologis dan  dihomogenkan  dengan  menggunakan vortex selama 3 menit. Setelah itu, diambil 1 ml dari larutan tanah yang telah homogen ke dalam tabung reaksi yang berisi 9 ml air steril untuk dilakukan pengenceran hingga pengenceran 10-4. 1 ml suspensi diambil dan dituang  pada  media  PDA  dan  diinkubasi selama  48  jam  pada  temperatur  ruang (±27 0 C).  Jamur  yang  tumbuh  diisolasi  ke media PDA agar didapatkan kultur murni.

## Pemurnian dan Peremajaan Isolat
Jamur  yang  tumbuh  pada  media PDA+Larutan  Fisiologis  selanjutnya  di- isolasi  pada  tiap  cawan  petri  yang  telah diberikan PDA (platting). Tiap koloni jamur yang  muncul  selanjutnya  dipindahkan  ke media baru dengan tujuan untuk mendapatkan isolat murni jamur tersebut.

## Identifikasi Jamur
Kegiatan  identifikasi  dilakukan  dengan
Agro Bali : Agricultural Journal                                                                                  e-ISSN 2655-853X Vol. 6 No. 2: 395-404, July 2023 https://doi.org/10.37637/ab.v6i2.1145
mengisolasi jamur pada media Slide Culture, yakni dengan meletakkan media PDA diatas kaca slide yang diletakkan pada cawan petri steril  yang  selanjutnya  diisolasi  jamur tersebut  dan  ditutup  dengan  object  glass. Setelah diinkubasi pada suhu ruang selama 3 hari, selanjutnya isolat jamur tersebut diamati organnya  pada  mikroskop.  Pada  perbesaran 100,  ditetesi  imersi  pada  object  glass  untuk mendapatkan fokus pada organ yang diamati. Identifikasi organ untuk menentukan klasifikasi  jamur  berdasarkan  buku  kunci identifikasi  jamur  Illustrated  Genera  of Imperfect  Fungi  Fourth  Edition  karya (Barnett & Barry B, 1998).

## Uji Patogenisitas
Uji  patogenisitas  dilakukan  dengan mengisolasi  jamur  rhizosfer  yang  telah dibiakkan  pada  PDB  pada  irisan  kentang yang  telah  disterilisasi  permukaa  dengan
menggunakan NaClO 3% selama 2 menit dan dibilas dengan aquadest steril 3 kali (Waruwu et  al.,  2016).  Pengamatan  dilakukan  dengan mengamati  gejala  pada  irisan  kentang  yaitu jika  irisan  kentang  menjadi  berwarna kehitaman  dan  membusuk  menandakan jamur  tersebut  adalah  patogen,  sedangkan apabila  benih  tumbuh  sehat  maka  jamur tersebut bukan patogen.

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Aspergillus spp.
Jamur Aspergillus spp. merupakan jamur yang  paling  banyak  ditemukan  di  rhizosfer pertanaman padi sawah.
Beberapa karakteristik  jamur Aspergillus spp. berbeda antara  satu  dan  lainnya  secara  makroskopis dan  mikroskopis,  seperti  yang  ditunjukkan pada  tabel  1.  Beberapa  karakteristik  yang dapat dideskripsikan disajikan pada Tabel 1.
Tabel 1. Karakteristik mikroskopis jamur Aspergillus spp. hasil isolasi rhizosfer daerah endemik
Kode Isolat Warna Koloni Tepi Koloni Permukaan Bawah Koloni Tekstur Septat/Aseptat Pigmen Konidia B-2 Hijau Tosca Hijau Gelap Kuning Valvety Aseptat Hialin Bulat B-3 Hijau Tosca Putih Kuning Valvety Aseptat Hialin Bulat B-9 Hijau Tosca Putih Hijau Valvety Aseptat Hialin Bulat B-12 Hijau Gelap Putih Kuning Valvety Aseptat Hialin Bulat
Dari  Tabel  1  diperoleh  bahwa  jamur Aspergillus spp.  memiliki  karakteristik morfologi  yang  berbeda-beda.  Pada  hasil penapisan jamur, diperoleh bahwa terdapat 4 jenis  jamur Aspergillus spp.  yang  di laboratorium.
Hasil penelitian (Trizelia & Rusli, 2012) menunjukkan bahwa koloni Aspergillus spp. yang diperoleh pada tanah rhizosfer umumnya  berwarna  hijau,  hitam,  dan  hijau kekuningan.  Secara  mikroskopis,  jamur Aspergillus spp. memiliki hifa yang bercabang dan bersekat, sedangkan konidiofornya  tidak  memiliki  percabangan, ada yang septat atau aseptat, tergantung dari jenis  spesiesnya.  Jamur Aspergillus spp.
dapat ditemukan di hampir semua lingkungan yang  kaya  akan  oksigen,  dimana  jamur Aspergillus spp. tumbuh sebagai jamur pada permukaan  substrat  sebagai  akibat  dari ketegangan  oksigen  yang  tinggi.  Jamur Aspergillus spp.  dapat  berperan  sebagai jamur  saprofit  atau  jamur  parasit.  Fase perkembangbiakan aseksual. Fase perkembangbiakan  jamur Aspergillus spp. menghasilkan konidia yang disangga dengan konidiofor. Konidia Aspergillus spp. berbentuk bulat, bergerombol, hingga mudah tersebar.  Konidiofor  jamur  berbentuk  tegak dan  tunggal  dengan  ujung  konidiofor  yang membengkak  dan  berbentuk  lonjong.  Pada ujung konidiofor bermunculan konidia bersel
satu yang berbentuk seperti bola seperti yang ditunjukkan pada Gambar 2.
Gambar 2. Beberapa jenis Aspergillus spp. yang ditemukan di rhizosfer daerah endemik. a. Secara Makroskopis, b. Secara Mikroskopis. Sumber: Dokumentasi langsung, 2022.
Jamur Aspergillus spp.  memiliki  sifat antagonis  terhadap  jamur  patogen  lainnya. Menurut  (Sarah  et  al.,  2018)  melaporkan bahwa jamur Aspergillus spp. dapat mengendalikan  jamur Fusarium  oxysporum dengan  efektivitas  daya  hambat  mencapai 66,33% pada bawang merah. Selain berkedudukan  sebagai antagonis pada jamur patogen, Aspergillus spp.  juga  dapat berkedudukan  sebagai  dekomposer  sisa tumbuhan  dan  binatang  yang  telah  mati. Jamur  ini  dapat  berasosiasi  dengan  bakteri dan organisme tanah lain dalam menciptakan
ekologi  dekomposit  yang  ideal  (Putra  et  al., 2020).
Penicillium spp. Jamur Penicillium spp. merupakan jamur banyak  ditemukan  di  rhizosfer  pertanaman padi  sawah.  Beberapa  karakteristik  jamur Penicillium spp.  berbeda  antara  satu  dan lainnya secara makroskopis dan mikroskopis, seperti  yang  ditunjukkan  pada  tabel  2. Beberapa karakteristik yang dapat dideskripsikan disajikan paa Tabel 2.
Tabel 2. Karakteristik mikroskopis hamur Penicillium spp. hasil isolasi rhizosfer pertanaman padi
Kode Isolat Warna Koloni  Tepi Koloni Permukaan Bawah Koloni Tekstur Septat/ Aseptat Pigmen Konidia B-7 Hijau Muda Putih Putih Butiran Septat Hialin Lonjong B-8 Hijau Tua Hijau Hijau Butiran Septat Hialin Lonjong
Pada  Tabel  2,  dapat  dilihat  pengamatan secara  mikroskopis  jamur Penicillium spp. memiliki ciri bagian bawah dan media yang berubah  warna  menjadi  kekuningan  yang diduga  sebagai  toksin  untuk  menghambat pertumbuhan  jamur  patogen  lain  dalam media  tumbuh  (antibiotik  dan  enzim). Selanjutnya diketahui bahwa Penicillium spp. memiliki  ciri  konidia  berbentuk  lonjong memanjang dan tersusun atas beberapa spora (Amaria et al., 2013).
Selanjutnya diketahui bahwa Penicillium spp.  menghasilkan  zat  antibiotik  berupa
nelisilin  yang  memiliki  keunggulan  dalam menghambat  sintesis  peptidoglikan  dinding sel mikroorganisme sehingga akan melemah dan mematikan bakteri (Josua, 2017) Menurut
(Purwantisari,
2009)
Penicillium spp. memiliki septa, sporangium berbentuk  seperti  sapu  dan  sterigma  serta konidia  yang  tersusun  seperti  rantai.  Koloni Penicillium spp. biasanya berwarna hijau dan terkadang berwarna kecoklatan (Angraeni & Usman, 2015) seperti yang ditunjukkan pada Gambar 3.
a b
a b
Gambar 3. Beberapa jenis Penicillium spp. yang ditemukan di rhizosfer daerah endemik. a. Secara Makroskopis, b. Secara Mikroskopis. Sumber: Dokumentasi Langsung, 2022
Penicillium spp. berperan sebagai dekomposer  yang  dapat  meningkatkan kesuburan tanah (Purwati & Hamidah, 2019). Selain berperan sebagai dekomposer, diketahui Penicillium spp.  juga  mampu berkedudukan  sebagai  pengendali  patogen penyebab  penyakit  pada  tanaman  (Rozali, 2015).
Mucor spp. Jamur Mucor spp.  merupakan  jamur yang  selanjutnya  ditemukan  di  rhizosfer pertanaman padi sawah. Beberapa karakteristik  jamur Mucor spp.  berbeda antara  satu  dan  lainnya  secara  makroskopis dan  mikroskopis,  seperti  yang  ditunjukkan pada  tabel  3.  Beberapa  karakteristik  yang dapat dideskripsikan disajikan pada Tabel 3.
Tabel 3. Karakteristik mikroskopis jamur Mucor spp. hasil isolasi rhizosfer pertanaman padi
Kode Isolat Warna Koloni Tepi Koloni Permukaan Bawah Koloni Tekstur Septat/ Aseptat Pigmen Konidia B-1 Hitam Hitam Putih Butiran Aseptat Hialin Bulat B-10 Hijau Muda Putih Putih Butiran Aseptat Hialin Bulat
Berdasarkan  Tabel  3,  dapat  dilihat pengamatan secara mikroskopis jamur Mucor spp. memiliki ciri konidium berbentuk bulat dan  secara  makroskopis  terlihat  berbentuk seperti jarum. Jamur Mucor spp. memiliki ciri hifa tidak bersekat, konidiofor tunggal tanpa rhizoid,  sporangium,  kolumela  dan  spora berbentuk bulat. Jamur Mucor spp. biasanya ditemukan sebagai jamur endofit dan saprofit pada tanaman padi (Sopialena et al., 2021)
Isolat  jamur Mucor spp.  memiliki  hifa yang tidak berseptat, memiliki sporangiosfor berbentuk  bulat  dan  tumbuh  pada  hampir seluruh miselia. Kumella berbentuk silinder,
sporangium  berbentuk  bulat  dan  tidak membentuk stolon. Hifa tidak bercabang dan tidak bersepta (Gambar 4). Menurut (Izzatinnisa’ et  al.,  2020) jamur Mucor spp. mampu  menghambat  pertumbuhan  jamur Fusarium  oxysporum  dalam  keadaan  invitro dengan  persentase  hambatan  59,84%.  Pada isolat Mucor spp. lainnya yang ditemukan di lapang  mampu  menghambat  pertumbuhan jamur  F.  oxysporum  dengan  persentase hambat  70,88%.  Kategori  hambatan Mucor spp.  terhadap  jamur  F.  oxysporum  dapat dikategorikan  sebagai  hambatan  sedang karena  hambatan  yang  diberikan  hanya
a b
Agro Bali : Agricultural Journal                                                                                  e-ISSN 2655-853X Vol. 6 No. 2: 395-404, July 2023 https://doi.org/10.37637/ab.v6i2.1145
sebesar 70%. Hal ini mendukung pernyataan (Chadha  et  al.,  2015)  bahwa  jamur Mucor spp. dapat berperan sebagai jamur antagonis yang memiliki mekanisme kompetisi terhadap ruang tumbuh, mikoparasitisme dan antibiosis.  Jamur  ini  uga  dilaporkan  mampu memproduksi  hidroksi  sianida  yang  dapat menghambat pertumbuhan jamur patogen.
Gambar 4. Beberapa jenis Mucor spp. yang ditemukan di rhizosfer daerah endemik blast. a. Secara Makroskopis, b. Secara Mikroskopis. Sumber: Dokumentasi Langsung, 2022.

## Uji Patogenisitas
Berdasarkan  hasil  identifikasi  jamur, diperoleh  beberapa  jenis  jamur  yang  akan diuji  di  laboratorium.  Pengujian  dilakukan dengan mengisolasi koleksi isolat jamur yang
di-suspensi  pada  media  PDB  pada  irisan kentang  yang  telah  disterilisasi  permukaan dengan  menggunakan  larutan  clorox  5% seperti pada Gambar 5.
Gambar 5. Isolasi jamur rhizosfer pada media irisan kentang. Sumber: Dokumentasi Langsung, 2022.
Dari  gambar  5,  diketahui  bahwa  tidak terdapat  jamur  yang  bersifat  patogenik  pada media irisan kentang. Pengujian dilaksanakan dengan  tujuan  untuk  melihat  potensi
patogenik  pada  cendawan  hasil  eksplorasi rhizosfer  tanaman  padi.  Potensi  patogenik jamur  tampak  pada  irisan  kentang  apabila terjadi perubahan warna pada permukaannya.
a b
Agro Bali : Agricultural Journal                                                                                  e-ISSN 2655-853X Vol. 6 No. 2: 395-404, July 2023 https://doi.org/10.37637/ab.v6i2.1145
Perubahan  warna  yang  terjadi  ditandai apabila  irisan  kentang  berubah  warna menjadi  kehitaman.  Namun  pada  pengujian jamur rhizosfer tanaman padi tidak ditemukan perubahan warna dan bentuk pada media irisan kentang yang diuji. Penggunaan suspensi  jamur  pada  media  PDB  yang selanjutnya  diisolasi  pada  media  irisan kentang  yang  telah  disterilisasi  permukaan bertujuan  untuk  menghasilkan  metabolit sekunder  yang  akan  menghasilkan  potensi patogenik  jamur  tersebut  (Wathan  et  al., 2022).
Potensi patogenik merupakan salah satu indikator bahwa jamur hasil eksplorasi tidak dapat  digunakan  sebagai  perlakuan  pada penelitian.  Sebab,  jamur  yang  bersifat patogenik  tidak  akan  mampu  berkedudukan sebagai agens dalam mengendalikan patogen uji ( M. grisea ).
Uji patogenisitas dilakukan untuk menunjukkan  potensi  patogenik  suatu  isolat jamur terhadap tanaman. Apabila isolat jamur yang diisolasi dari berbagai sumber menunjukkan potensi patogenik, maka jamur tersebut tidak dapat digunakan sebagai agens untuk mengendalikan jamur patogen (Sugiarta et al., 2021).
Kejadian  penyakit  berbeda  di  setiap lokasi.  Pola  tanaman  yang  diusahakan  di lokasi  tertentu  mempengaruhi  kejadian penyakit dan epidemiologi penyakit tanaman. Sendayan,  Langkat  dikategorikan  sebagai daerah  endemik  penyakit  Blas  karena memiliki pola tanam serempak dan menggunakan irigasi terbatas yang menjadikan  inoculum  tetap  berada  pada lokasi  tersebut.  Hal  ini  diperparah  dengan pola pemupukan N yang berlebihan menyebabkan tanaman lebih mudah terinfeksi  pathogen  (Safrizal,  Lisnawita,  K Lubis, 2020).

## SIMPULAN
Terdapat  13  isolat  jamur  pada  lokasi penelitian.  Setelah  dilakukan  identifikasi secara morfologi mikroskopik dan makroskopik ditemukan 3 genus jamur yang terdapat pada rhizosfer daerah endemik blas,
diantaranya Aspergillus , Penicillium dan Mucor . Aspergillus spp.  yang  merupakan genus  jamur  yang  paling  berlimpah  pada daerah  endemik  blas  padi  dan  bersifat nonpatogenik.

## UCAPAN TERIMA KASIH
Ucapan  terima  kasih  penulis  tujukan kepada  tim  peneliti  yang  telah  membantu penulis dalam menyelesaikan penelitian ini.

## DAFTAR PUSTAKA
Amaria, W., Taufiq, E., & Harni, R. (2013). Seleksi dan identifikasi jamur antagonis sebagai  agens  hayati  jamur  akar  putih Rigidoporus  microporus  pada  tanaman karet. Jurnal  Tanaman  Industri  Dan
Penyegar , 4 (1), 55–64.
Angraeni,  D.  N.,  &  Usman,  M.  (2015).  Uji Aktivitas  Jamur  Rhizosfer  pada  Tanah Perakaran  Tanaman  Pisang  (Musa paradisiaca) Terhadap Jamur Fusarium. Jurnal  Biologi  Lingkungan,  Industri,
Dan Kesehatan , 1 (2), 89–98.
Barnett,  H.  L.,  &  Barry  B,  H.  (1998). Illustrated Genera of Imperfect Fungi. In Illustrated Genera of Imperfect Fungi . Chadha, N., Prasad, R., & Varma, A. (2015). Plant  promoting  activities  of  fungal endophytes associated with tomato roots from  Central  Himalaya, India and their interaction  with  Piriformospora  indica. International  Journal  of  Pharma  and Bio Sciences , 6 (1), B333–B343.
Darmawan,  E.  (2016).  Eksplorasi  Jamur Entomopatogen  Beauveria  bassiana, Metarrhizium  anisopliae,  dan  Jamur Antagonis Trichoderma sp. Pada Beberapa  Sampel  Tanah  Pertanaman Tembakau. Skripsi , 1 (1), 1–42.
Donggulo, C. V, Lapanjang, I. M., & Made, U.  (2017).  Growth  and  Yield  of  Rice (Oryza  sativa  L.)  under  Different  Jajar Legowo  System  and  Planting  Space. J.
Agroland , 24 (1), 27–35.
http://jurnal.untad.ac.id/jurnal/index.ph
p/AGROLAND/article/view/8569
Eisenman,  H.  C.,  &  Casadevall,  A.  (2012).
Synthesis  and  assembly  of  fungal
melanin. Applied  Microbiology  and
Biotechnology , 93 (3), 931–940.
https://doi.org/10.1007/s00253-011- 3777-2
Izzatinnisa’,  I.,  Utami,  U.,  &  Mujahidin,  A. (2020).  Uji  Antagonisme  Beberapa Fungi  Endofit  pada  Tanaman  Kentang terhadap Fusarium oxysporum secara In Vitro. Jurnal  Riset  Biologi  Dan
Aplikasinya , 2 (1), 18. https://doi.org/10.26740/jrba.v2n1.p18- 25 Josua. (2017). Mikologi Tanaman: Penicillium  Paecilomyces  Aspergillus. Jurnal Universitas Padjadjaran , March 2017 , 1–22. https://doi.org/10.13140/RG.2.2.11700. 96642 Kurniawati, A. S. (2023). Pengaruh Konsentrasi  Pupuk  Organik  Cair  pada Pengembangan  Padi  Lokal  dengan Sistem  Tanam  Polybag  Effect  of Concentration of Liquid Organic Fertilizer  on  Local  Rice  Development with  Polybag  System. Agro  Bali (Agricultural Journal) , 6 (1), 105–115. Lubis;, W. I. S. L. and K. (2019). Screening for  disease  resistance  in  rice  varieties against bacterial panicle blight disease ( Burkholderia  glumae  )  in  Northern Sumatra  of  Indonesia  Screening  for disease  resistance  in  rice  varieties against bacterial panicle blight disease ( Burkholderia. IOP  Conf.  Series:  Earth and Environmental Science 260 , 012118 (260), 6. https://doi.org/10.1088/1755- 1315/260/1/012118 Noerfitryani.  (2018).  Inventarisasi  Jenis  –
Jenis Cendawan pada Rhizosfer Pertanaman  Padi  Inventory  Types  Of Fungi  on  Rice  Plants  Rhizosphere. Jurnal Galung Tropika , 7 (1), 11–21.
Purwantisari, S. (2009). Antagonisme Jamur
Patogen Phytophthora infestans Penyebab  Penyakit  Busuk  Daun  dan
Umbi Tanaman Kentang Dengan
Menggunakan  Trichoderma  spp.  Isolat. Bioma , 11 (1),
8–9.
http://eprints.undip.ac.id/2000/%5Cnhtt p://repository.ipb.ac.id/handle/1234567
89/5702 Purwati,  P.,  &  Hamidah,  H.  (2019). Biodiversitas Mikroba Rizosfer
Tanaman  Jeruk  Keprok  Borneo  Prima (Citrus  reticulata  cv  Borneo  Prima). Agrifarm : Jurnal Ilmu Pertanian , 7 (2), 50–53.
https://doi.org/10.24903/ajip.v7i2.431
Putra,  G.  W.,  Ramona,  Y.,  &  Proborini,  M. W.  (2020).  Eksplorasi  Dan  Identifikasi Mikroba  Pada  Rhizosfer  Tanaman
Stroberi (Fragaria x ananassa Dutch.) Di Kawasan Pancasari Bedugul. Metamorfosa:  Journal  of  Biological Sciences , 7 (2), 62. https://doi.org/10.24843/metamorfosa.2 020.v07.i02.p09 Rozali, G. (2015). Penapisan jamur antagonis indigenus  rizosfir  kakao  (Theobroma cacao Linn.) yang berpotensi menghambat pertumbuhan jamur
Phytophthora  palmivora  Butler.  In
Fakultas Pertanian: Vol. Diploma . Safrizal, Lisnawita, K Lubis, F. J. M. M. and I.  S.  (2020).  Mapping  bacterial  leaf blight  disease  of  rice  (  Xanthomonas oryzae  pv  oryzae  )  in  North  Sumatra Mapping bacterial leaf blight disease of rice ( Xanthomonas oryzae pv oryzae ) in  North  Sumatra. IOP  Conf.  Series:
Earth  and  Environmental  Science , 454 (012160),
7.
https://doi.org/10.1088/1755- 1315/454/1/012160
Sarah,  Asrul,  &  Lakani,  I.  (2018).  Uji Antagonis  Jamur  Aspergillus  niger terhadap Perkembangan Jamur
Patogenik  Fusarium  oxysporum  pada Bawang Merah ( Allium cepa agregatum L . aggregatum group ) Secara In Vitro. Agrotekbis , 6 (2), 266–273.
Prabawa,  P.  S.  (2018).  Evaluasi  Ketahanan Genotip  Padi  Beras  Merah  ( Oryza Sativa L.) terhadap Penyakit Blas Daun (Pyriculariaoryzae Cav.) RAS 173. Agro Bali (Agricultural Journal) , 1 (2), 82–87. Sopialena,  Syaifudin,  E.  A.,  &  Rusdiana.
(2021). Kemampuan Jamur Endofit Padi Dalam Menghambat Pertumbuhan
Jamur  Penyebab  Penyakit  Tanaman Padi  (Oryza  sativa  L)  Secara  In  Vitro. Jurnal Agroekoteknologi Tropika Lembab , 4 , 42–49.
Suganda,  T.,  Yulia,  E.,  Widiantini,  F.,  & Hersanti.  (2016).  Intensitas  penyakit blas (Pyricularia oryzae Cav .) pada padi varietas Ciherang di lokasi endemik dan pengaruhnya  terhadap  kehilangan  hasil
[Disease  intensity  of  blast  disease (Pyricularia  oryzae  Cav.)  of  Ciherang rice variety at the endemic location and. Jurnal Agrikultura , 27 (3), 154–159. Sugiarta, D., Sudiarta, I. P., Suniti, N. W., & Suputra,  I.  P.  W.  (2021).  Identifikasi Jamur Patogen Penyebab Penyakit Layu Pucuk pada Tanaman Adenium spp . di
Kota Denpasar dan Potensi Pengendaliannya dengan Jamur
Antagonis. Jurnal  Agroekoteknologi Tropika , 10 (3), 357–365. Supriyanto,  &  Sulistyowati,  H.  (2011). Pengembangan  PGPF  Menjadi  Pupuk Pestisida. J. Tek. Perkebunan & PSDL ,
1 , 19–27.
Trizelia, T., & Rusli, R. (2012). Kompatibilitas Cendawan Entomopatogen  Beauveria  Bassiana (Bals) Vuill (Deuteromycotina: Hyphomycetes)  Dengan  Minyak  Serai
Wangi. Jurnal  Hama  Dan  Penyakit Tumbuhan  Tropika , 12 (1),  78–84. https://doi.org/10.23960/j.hptt.11278- 84
Waruwu,  A.,  Soekarno,  B.,  &  Munif,  A. (2016).  "Metabolite  of  Endophytic
Fungi  Isolated  from  Rice  as  an Alternative  to  Control  Seed-borne Pathogenic  Fungi  on  Rice  ". Jurnal Fitopatologi  Indonesia , 12 (2),  53–61. https://doi.org/10.14692/jfi.12.2.53
Wathan,  N.,  Viogenta,  P.,  Ramadhan,  F., Sari,  S.  R.,  &  Azizah,  J.  (2022). Identifikasi  Jamur  Endofit  dari  Akar Tumbuhan  Seluang  Belum  Luvunga
sarmentosa  (  Blume  )  Kurz  )  Asal
Kabupaten  Tabalong  Kalsel. Prosiding
Seminar … , 7 (April), 5–8. https://snllb.ulm.ac.id/prosiding/index.p hp/snllb- lit/article/view/764%0Ahttps://snllb.ul
m.ac.id/prosiding/index.php/snllb- lit/article/viewFile/764/771
Wu,  B.  M.,  Subbarao,  K.  V.,  &  Liu,  Y.  B. (2008). Comparative survival of sclerotia  of  Sclerotinia  minor  and  S. sclerotiorum. Phytopathology , 98 (6), 659–665.
https://doi.org/10.1094/PHYTO-98-6- 0659
Wulansari, N. K., Dwi, R., Windriyati, H., & Kurniawati,  A.  (2023).  Efektifitas Formulasi  Pupuk  Organik  Cair  dan Pupuk Hayati-P60 Mengendalikan Penyakit  Hawar  Daun  Bakteri  pada Tanaman  Tomat  Ceri  (  Solanum lycopersicum  )  Sistem  Hidroponik Effectiveness  of  Formulation  Liquid
Organic Fertilizer and Bio-P60 Fertilizer in Con. Agro Bali
(Agricultural Journal) , 6 (1), 74–81.