## PENERAPAN TEKNIK  IMOTILISASI  MENGGUNAKAN  EKSTRAK ALGA LAUT  (Caulerpa sertularioides)  DALAM  TRANSPORTASI  IKAN

## KERAPU (Epinephelus suillus) HIDUP TANPA MEDIA AIR
Dadi  Sukarsa 1

## Abstrak
Ekstrak Caulerpa  sertularioides dapat    memingsankan  maupun    mematikan    ikan  kerapu  lumpur ( Ephinephelus suillus ) tergantung dari konsentrasi yang digunakan.  Pada media air laut,  konsentrasi yang dapat mematikan 50 % ikan selama waktu dedah 24 dan 48 jam berturut-turut adalah 0,646% dan 0,485%. Pada  konsentrasi  0,295  %,  0,642  %,  0,946  %  dan  1,346  %  dapat  memingsankan    50  %  populasi  kerapu masing-masing  dalam  waktu  18,27;  18,01;  15,19;  11,81  menit  dan  kerapu  dapat  pulih  sadar  setelah  20-30 menit.    Penggunaan  ekstrak  ganggang  laut  untuk  transportasi    tanpa  media  air  selama  12  jam memperlihatkan bahwa pada konsentrasi 0,946%  kelangsungan hidup ikan kerapu dapat mencapai 100%.
Kata kunci : Caulerpa sertularioides, Ikan kerapu lumpur , Waktu dedah

## PENDAHULUAN
Penelitian  penerapan  teknik  imotilisasi  dengan  menggunakan  suhu  rendah  maupun bahan  antimetabolik  dalam  transportasi  ikan  kerapu  hidup  tanpa  media  air  belum dilakukan.    Alternatif  penerapan  teknik  imotilisasi  menggunakan  bahan  antimetabolik yang  berupa  zat  anestetik  untuk  pembiusan  kerapu  diharapkan  dapat  memberikan  efek pingsan  yang  lebih  lama,  sehingga  ikan  dapat  ditransportasikan  dengan  jangkauan  yang lebih jauh.
Bahan anestetik kimia seperti tricaine (MS-22) biasa digunakan sebagai zat pembius dalam  transportasi  induk  ikan,  benih  dan  ikan  hias  agar  tingkat  kelulusan    hidup  ikan setinggi-tingginya  sampai  tempat  tujuan.    Akan  tetapi  bila  digunakan  untuk  pembiusan ikan  konsumsi,  seperti  kerapu  meninggalkan  residu  yang  membahayakan  terhadap keamanan produk (Subasinghe, 1997).  Penerapan teknik  imotilisasi  dengan ekstrak alga laut ( Caulerpa sertularioides) sebagai bahan pembius dalam penanganan dan transportasi ikan kerapu hidup tanpa  media air perlu dilakukan.  Dalam penelitian  ini  akan dilakukan pengujian  daya  pembiusan  ekstrak  terhadap  kerapu  yang  meliputi  konsentrasi  ekstrak
1 Staf Pengajar Departemen Teknologi Hasil Perairan FPIK IPB
yang dapat memingsankan kerapu, toksisitas dan bioaktivitas ekstrak.  Selanjutnya dari uji biologis  ini  dapat  ditentukan  konsentrasi  efektif  ekstrak  yang  dapat  digunakan  dalam transportasi kerapu hidup.
Dari  penelitian  ini  diharapkan  akan  didapatkan  metodologi  penanganan  dan transportasi  ikan  kerapu  hidup  tanpa  media  air,  dengan  menggunakan  ekstrak  alga  laut untuk diaplikasikan di lapangan.

## METODE PENELITIAN

## Bahan dan Alat
Bahan  yang  digunakan  untuk  penelitian  ini  adalah  ekstrak  alga  laut ( Caulerpa  sertularoides ),  hewan  uji,  media  dan  wadah  uji/percobaan  serta  bak penampungan.
Alga laut ( Caulerpa sertularoides ) dikumpulkan dari sekitar pulau Pari, Kepulauan Seribu.  Ekstraksi bahan anestetik dari alga laut menggunakan metode Quinn (1988) yang telah dimodifikasi.  Ekstrak yang  mengandung  bahan anestetik  ini digunakan sebagai zat pembius  ikan  kerapu  lumpur  ( Epinephelus  suillus )  dengan  berat  sekitar  300-350 gram/ekor  yang  diperoleh  dari  Unit  Pelaksana  Teknis  (UPT)  Balai  Penelitian  Perikanan Laut-Ancol.
Media  percobaan  untuk  pembiusan  digunakan  air  laut  yang  berasal  dari Gelanggang  Samudra  Ancol.    Sebelum  digunakan,    air  laut  diendapkan  dan  diaerasi selama 24 jam.
Wadah  percobaan  berupa  akuarium  berukuran  70x40x60  cm 3 yang  diisi  air  laut sebanyak  25  liter.    Wadah  pengujian  untuk  transportasi  sistem  kering  digunakan  kotak styrofoam berukuran  60x40x25  cm 3 dengan  media  pengisi  serbuk  gergaji  yang  telah dibersihkan dan dilembabkan dengan air laut lalu didinginkan (14 0 C).

## Metode Penelitian
Penelitian  dilakukan  dalam  dua  tahap.    Tahap  pertama  adalah  pengujian  daya pembiusan  bahan  anestetik  ekstrak Caulerpa sertularoides ,  yang  meliputi  uji  toksisitas ekstrak yang dinyatakan dengan Median Lethal Concentration (LC-50) dan Median Lethal Concentration (LT-50) serta konsentrasi efektif (EC-50), dilaksanakan dengan metode uji biologis  menurut  APHA  (1976)  dan  Komisi  Pestisida  (1983).    Peluruhan  senyawa anestetik  diukur  dengan  Spektrofotometer  UV-VIS.    Tahap  kedua  adalah  percobaan penanganan  dan  transportasi  ikan  kerapu  tanpa  media  air,  dimana  ekstrak Caulerpa sertularoides digunakan sebagai bahan antimetabolik untuk pembiusan ikan kerapu.

## a) Penentuan konsentrasi ambang dan dosis perlakuan
Tahap  ini  dilakukan  untuk  memperoleh  konsentrasi  ambang  atas  dan  ambang bawah  bahan  anestetik  ekstrak    alga  laut.    Konsentrasi  ambang  adalah  konsentrasi  yang menyebabkan 95 % populasi  hewan uji  hidup dalam waktu 48  jam (ambang  bawah) dan konsentrasi  yang  menyebabkan  hewan  uji  mati  dalam  waktu  24  jam  (ambang  atas), pengujian ini bersifat “trial run”.
Pada  penentuan  konsentrasi  ambang  digunakan  derajat  konsentrasi  ekstrak  alga laut  (bahan  uji),  yaitu  X 1 ,  X 2 ,  X 3 ,  X 4 ,  dan  X 5 .    Setiap  konsentrasi  merupakan  perlakuan yang  diulang  sebanyak  3  kali.    Pengamatan  dilakukan  pada  jam  ke-24  dan  48,  dihitung mulai  bahan  uji  dimasukkan  dalam  wadah  uji.    Ke  dalam  setiap  wadah  percobaan dimasukkan  5  ekor  kerapu.    Selama  percobaan  kerapu  tidak  diberi  pakan  dan  air  media dioksigenasi.  Kerapu yang mati pada setiap perlakuan dicatat dan dikeluarkan dari wadah percobaan.
Vol VIII  Nomor 1 Tahun 2005
Dosis  perlakuan  pada  uji  toksisitas  dan  daya  anestetik  ekstrak  alga  laut  ditentukan dalam interval logaritmik yang diperoleh dengan rumus:
) 1 ( ) (              n a n N Log k Log ) 2 (                         e N d e c d b c a b n a
Dengan  rumus  (1)  dapat  dihitung  nilai  konsentrasi  terkecil.    Selanjutnya  dapat dihitung berturut-turut konsentrasi b, c, d dan e dengan menggunakan (2).

## b) Pengujian aktivitas ekstrak
Pengujian  aktivitas  bahan  anestetik  ekstrak Caulerpa  sertularoides meliputi penentuan  toksisitas  yang  dinyatakan  dengan Median  Lethal  Concentration (LC-50)  dan LT-50,  penentuan  daya  pembiusan  yang  dinyatakan  dalam  EC-50  serta  peluruhan kandungan senyawa ekstrak.
Median Lethal Concentration (LT-50) merupakan konsentrasi  yang  menyebabkan 50 % hewan uji  mengalami kematian.  Penentuan Median Lethal Concentration (LC-50) terdiri  dari  6  perlakuan  masing-masing  dengan  3  kali  ulangan.    Lima  ekor  kerapu dimasukkan  secara  acak  dalam  setiap  wadah  percobaan,  selama  percobaan  kerapu dipuasakan  dan  air  media  dioksigenasi.    Pengamatan  dilakukan  pada  jam  ke-24  dan  48 setelah  bahan  anestetik  dituangkan  ke  dalam  wadah  uji.    Jumlah  kerapu  uji  yang  mati dicatat dan dikeluarkan untuk mencegah tercemarnya media uji.
N  =  konsentrasi ambang atas n   =  konsentarsi ambang bawah k  =  jumlah konsentrasi yang diuji a  =  konsentrasi  terkecil  dalam  deret yang akan ditentukan.
Median  Lethal  Concentration  (LT-50)  ditunjukkan  sebagai  waktu  paruh  bahan untuk  mengurangi  setengah  kali  daya  racunnya  yang  setara  dengan  nilai Lethal Concentration (LC) 100-24 jam, yakni konsentrasi yang mematikan hewan uji hampir 100 %  dalam  waktu  24  jam.    Nilai  LC  100-24  jam  diperoleh  dari  konsentrasi  ambang  atas. Dalam  percobaan,  sebanyak  5  ekor  kerapu  dimasukkan  ke  dalam  setiap  wadah  secara bertahap pada  interval waktu tertentu ditentukan  dengan deret hitung  logaritmik.   Waktu pemasukan  hewan  uji  tersebut  adalah  pada  jam  ke-0,  3,  6,  9  dan  24  sebagai  umur perlakuan dicatat setelah waktu 24 jam.
Penentuan  daya  anestesi  ekstrak Caulerpa  sertularoides dinyatakan  dengan  nilai EC-50 (Effective Concentration) , yaitu waktu yang diperlukan untuk memingsankan 50 % hewan  uji  pada  masing-masing  konsentrasi  perlakuan.    Perlakuan  yang  diberikan  ada  6 dengan  3  kali  ulangan  dengan  kepadatan  5  ekor kerapu  untuk  setiap  wadah  uji.    Selama percobaan hewan uji dipuasakan dan air media diaerasi.  Kerapu yang pingsan ditunjukkan dengan keadaan diam atau tenang, posisi tubuh tetap stabil di dasar media air, operkulum dan  mulut  bergerak  lamban,  bila  disentuh  tidak  banyak  memberikan  perlawanan. Pengamatan  dilakukan  setiap  saat  dan  dicatat  secara  akumulatif  pada  menit  ke-5,  10,  15 dan 30.  Setelah semua kerapu pingsan, dipindahkan ke dalam media air laut bersih untuk mengetahui waktu pulih sadar.
Peluruhan  kandungan  senyawa  anestetik  diukur  dengan  menggunakan  alat Spektrofotometer UV-VIS.

## c) Pengamatan parameter kualitas air media uji
Pengamatan  kualitas  air  dilakukan  pada  setiap  konsentrasi  perlakuan  setelah pemberian larutan ekstrak.  Parameter yang diukur adalah DO, pH, salinitas dan amonia.

## d) Analisa data
Metode yang digunakan untuk menganalisa data hasil pengujian toksisitas LC-50 dan  LT-50  dihitung  dengan  analisa  probit  (Finney,  1971),  seperti  yang  diusulkan  APHA (1976) dan Komisi Pestisida (1983).

## Penerapan ekstrak alga laut dalam transportasi ikan hidup tanpa media air
Percobaan  ini  dimaksudkan  untuk  mengetahui  ketahanan  ikan  kerapu  di  dalam media  bukan  air  setelah  diimotilisasikan  dengan  ekstrak  bahan  anestetik  ganggang  laut. Konsentrasi  ekstrak  yang  digunakan  diperoleh  dari  hasil  pengujian  bioessai  sebelumnya pada kisaran konsentrasi yang menyebabkan ikan pingsan 100% dalam waktu tertentu.
Dalam  percobaan  ini  ikan  kerapu  ditempatkan  langsung  di  dalam  media  air  laut yang   telah   mengandung ekstrak bahan anestetik pada   konsentrasi   0,295 %,   0,435 %, 0,692  %,  0,946  %  dan  1,346  %,  dan  ikan  dibiarkan  selama  30  menit.    Setelah  ikan pingsan,  ikan  dikemas  dalam  media  serbuk  lembab  dingin  (14 0 C)  dan  ditransportasikan selama 6 dan 12 jam.
Pengemasan dilakukan sebagai berikut.  Ke dalam dasar kemasan kotak styrofoam dimasukkan  hancuran  es  (0,5  kg)  yang  dibungkus  kantong  plastik  kemudian  ditutup dengan  kertas  koran.    Di  atas  kertas  koran  dihamparkan  serbuk  gergaji  lembab  dingin (14 0 C) setebal sekitar 10 cm.  Di atas lapisan serbuk gergaji dimasukkan ikan kerapu yang sudah  motil berderet dengan posisi tubuh tegak.  Di atas ikan dihamparkan media serbuk gergaji lembab dingin setebal sekitar 20 cm.  Kemudian kotak styrofoam ditutup rapat.
Setelah ditransportasikan selama 6 dan 12  jam kemasan dibongkar,  ikan diangkat dan      serbuk    gergaji   yang    menempel    dibersihkan   dengan   air   laut.   Ikan kerapu dipulih sadarkan di dalam air laut normal (suhu ruangan) sampai bugar kembali.  Jumlah ikan yang masih hidup dan mati serta waktu pulih sadar dicatat untuk dianalisis.

## HASIL DAN PEMBAHASAN

## Penentuan Aktivitas Senyawa Ekstrak
Penentuan  aktivitas  bahan  anestetik  meliputi  penentuan  dengan  nilai  LC-50  dan LT-50,  penentuan  daya  anestetik  yang  dinyatakan  dengan  EC-50  serta  penentuan kandungan senyawa anestetik.

## Toksisitas Ekstrak Ganggang Laut
Berdasarkan  hasil  pengujian  ambang  atas  dan  ambang  bawah,  didapat  dosis perlakuan  dengan  perhitungan  logaritmis,  yaitu  1,396  %,  0,946  %,  0,642  %,  0,435  %, 0,295  %  serta  0  %  sebagai  kontrol  perlakuan.    Penentuan  toksisitas  terhadap  hewan  uji dilakukan untuk menentukan batas yang menyebabkan kematian pada kerapu uji.
Hasil  pengujian  memperlihatkan  bahwa  konsentrasi  ekstrak  terendah  sebesar 0,295 % menghasilkan respon kematian sebesar 6,67 % dalam waktu 24 jam dan 13,33 % dalam  waktu  48  jam.    Sedangkan  konsentrasi  ekstrak  tertinggi  yaitu  sebesar  1,369  % menghasilkan respon kematian sebesar 93,33 % dalam waktu terendah 24 jam dan 100 % dalam  waktu  48  jam.    Terlihat  adanya  kecenderungan  yaitu  dengan  semakin  tingginya konsentrasi akan memberikan respon kematian yang lebih besar.
Median Lethal Concentration (LC-50) pada waktu dedah 24 jam diperoleh dengan menggunakan  analisa  probit.  Penggunaan  analisa  probit  dimaksudkan  untuk menyederhanakan  perhitungan,  dimana  nilai  persentase  kematian  diubah  dalam  nilai probit (probit = probability-peluang) dengan menggunakan tabel transformasi probit dan konsentrasi/dosis dinyatakan sebagai nilai logaritmanya (Finney, 1971).  Persamaan linier hasil     analisa    probit     yang   digunakan   untuk   mencari   nilai   LC50-24 jam,    yaitu Y = 1,549 + 4,258 X dimana X adalah logaritma konsentrasi dan Y adalah probit kematian pada jam ke-34.  Nilai LC50-24 jam yang dihasilkan sebesar  0,646 %.  Persamaan linier yang       diperoleh     dari    analisa    probit    untuk    mencari     LC 50 – 24 jam     adalah
Y  =  1,172  +  4,793  X,  sehingga  nilai  LC50-48  jam  didapat  sebesar  0,485  %.  Besarnya konsentrasi  yang  diperlukan  untuk  mematikan  50  %  kerapu  uji  dengan  waktu  24  jam (LC50-24 jam) adalah 0,646 %, sedangkan konsentrasi yang mematikan     50 % populasi kerapu  uji  dalam  waktu  48  jam  (LC50-48  jam)  adalah  0,485  %.    Terlihat  bahwa  nilai LC50-24 jam lebih besar dari nilai LC50-48 jam.
Pengukuran Lethal Time (LT50) dilakukan untuk mengetahui perubahan toksisitas bahan  uji  setelah  waktu  tertentu  dalam  media  uji.    Pada  pengujian  ini  konsentrasi  yang digunakan  untuk  semua  perlakuan  adalah  sama,  yaitu  konsentrasi  1,4  %  yang  diperoleh dari  uji  ambang.    Perlakuan  merupakan  umur  uji  bahan,  dihitung  setelah  bahan  uji dilarutkan dalam media uji, yaitu umur bahan uji jam ke-0, 3, 6, 9, 24 dan 48 jam dengan waktu dedah 24 jam.  Data tersebut menunjukkan bahwa kematian hewan uji terjadi pada umur  bahan  uji  jam  ke-0,  3,  6  dan  24,  sedangkan  pada  umur  bahan  uji  ke-48  tidak ditemukan  adanya  kematian  hewan  uji.    Kematian  hewan  uji  tertinggi  terjadi  pada  umur bahan uji jam ke-0 sebesar 93,33 %.
Pengujian  LT50  memperlihatkan  adanya  kecenderungan  penurunan  kematian hewan uji seiring dengan terjadinya kenaikan umur bahan uji.  Semakin lama umur bahan uji  dalam  air,  terjadi  pengurangan  aktivitas.    Hal  ini  kemungkinan  adanya  penguapan bahan uji karena senyawa bioaktif merupakan senyawa volatil.
Berdasarkan  hasil  pengujian  dengan  menggunakan  analisa  probit  diperoleh persamaan  linier  Y  =  7,293  –  2,580  X,  dimana  X  merupakan  umur  bahan  uji  (jam), sedangkan  Y  adalah  jumlah  kematian  kerapu  uji  (%).    Berdasarkan  persamaan  linier tersebut diperoleh nilai LT50 pada umur bahan uji 8 jam 14 menit, artinya dalam waktu 8 jam  14  menit,  toksisitas  cairan  ekstrak Caulerpa  sertularoides mengalami  penurunan sebesar 50 %.
Penentuan daya anestesi ekstrak yang dinyatakan dengan EC-50 dilakukan dengan konsentrasi  yang sama dengan uji toksisitas,  yaitu 1,396 %, 0,946 %, 0,642 %, 0,435 %, 0,295 % dan 0 % sebagai kontrol.
Konsentrasi  yang  menyebabkan  ikan  pingsan  100  %  terjadi  pada  konsentrasi 0,946 % dan konsentrasi 1,396 % pada menit ke-30.  Semakin tinggi konsentrasi bahan uji semakin  besar  jumlah  kerapu  uji  yang  dapat  dipingsankan.    Terlihat  bahwa  pada  menit ke-10,  konsentrasi  0,295  %  mampu  memingsankan  kerapu  uji  sebesar  26,67  %, konsentrasi 0,435 % sebesar 26,67 %, konsentrasi 0,642 % sebesar 46,67 %, konsentrasi 0,946 % sebesar 66,67 % dan konsentrasi 1,396 % sebesar  80 %.  Hubungan antara waktu pingsan  (X)  dengan  jumlah  kerapu  pingsan  (Y)  pada  masing-masing  konsentrasi dihasilkan persamaan linier.
Berdasarkan    persamaan  linier  tersebut  diperoleh  waktu  yang  diperlukan  untuk memingsankan  ikan  50  %  populasi  kerapu  uji  pada  setiap  konsentrasi  bahan  uji,  yaitu konsentrasi  0,295  %  sebesar  18.,27  menit,  konsentrasi  0,435  %  sebesar  18,01  menit, konsentrasi  0,642  %  sebesar  15,19  menit,  konsentrasi  0,946  %  sebesar  11,81  menit  dan konsentrasi 1,396 % sebesar 10,71 menit.
Adanya  perbedaan  konsentrasi  menyebabkan  perbedaan  jumlah  hewan  uji  yang pingsan  dan  waktu  tercapainya  pingsan  juga  berbeda.    Hal  ini  diduga  bahwa  semakin tingginya      konsentrasi         bahan   uji    maka    semakin    tinggi   konsentrasi    ekstrak Caulerpa  sertularoides yang  terserap  dalam  jangka  waktu  tertentu.      Hal  ini mengakibatkan  fase  pingsan  semakin  cepat  tercapai.    Bahan  uji  akan  memingsankan kerapu uji selama kandungan anestetik dalam media masih dalam kondisi memingsankan.
Proses sebaliknya dari ketidaksadaran akibat pembiusan adalah ikan berada dalam keadaan  siuman  (sadar)  setelah  dipindahkan  dari  air  yang  mengandung  bahan  uji  ke  air laut tanpa perlakuan bahan uji.  Lama waktu yang diperlukan untuk mencapai pulih sadar setiap  perlakuan  berbeda-beda.    Waktu  yang  diperlukan  tercapainya  pulih  sadar  semua kerapu uji untuk setiap konsentrasi berkisar antara 20-30 menit.  Berdasarkan pengamatan terlihat bahwa kerapu uji mengalami pulih sadar 100 % dalam waktu kurang dari 30 menit. Tidak  terdapatnya  kematian  pada  kerapu  uji  diduga  karena  konsentrasi  ekstrak  tersebut tidak berakibat fatal bagi kelangsungan hidup ikan kerapu.
Hasil  analisa  regresi  linier  untuk  pulih  sadar  pada  konsentrasi  0,295  %,  jumlah kerapu  uji  yang  pulih  sadar  100  %  terjadi  pada  menit  ke-20.    Berturut-turut  waktu  yang diperlukan  kerapu  uji  untuk  pulih  sadar  pada  setiap  konsentrasi  adalah  sebagai  berikut: 0,435  %  pada  menit  ke-25,  0,642  %  pada  menit  ke-30,  0,946  %  pada  menit  ke-30  dan 1,396 pada menit ke-30.

## 1) Kandungan senyawa anestetik dalam ekstrak
Penentuan peluruhan kandungan senyawa anestetik dalam ekstrak Caulerpa sertularoides menggunakan alat Spektrofotometer UV-VIS.  Kisaran panjang gelombang yang digunakan untuk menentukan panjang gelombang yang menghasilkan absorbansi  maksimum  antara  200-700  nm.    Berdasarkan  hasil  pengujian  terhadap sampel, didapat nilai panjang gelombang 283 nm.
Kurva kalibrasi standar diperoleh dari penentuan absorbansi untuk menentukan kisaran konsentrasi 1,4 %, 0,7 %, 0,35 %, 0,175 % dan 0 % pada panjang gelombang 283  nm,  sehingga  didapat  persamaan  linier  Y  =  0,0663  +  0,428  X,  dimana  X  adalah konsentrasi (%) dan Y adalah absorban.
Berdasarkan  hasil  pengukuran  diketahui  bahwa  untuk  konsentrasi  bahan  uji 1.396  %  diduga  mengandung  bahan  anestetik  1,233  %.    Berturut-turut  untuk konsentrasi     0,946 %, 0,642 %, 0,435 %, 0,295 % adalah 0,808 %, 0,623 %, 0,411 % dan 0,259 %.

## 2) Transportasi ikan hidup tanpa media air
Setelah  dikemas  selama  6  jam  di  dalam  media  serbuk  gergaji  dingin,  masih cukup  banyak  ikan  kerapu  yang  bertahan  hidup.    Pada  saat  ikan  dibongkar  dari kemasan, ditemukan 77,33 % ikan hidup pada konsentrasi ekstrak 0,295 %; sebanyak 66,66 % ikan hidup pada konsentrasi ekstrak 0,435 %; sebanyak 93,33  % ikan  hidup pada  konsentrasi  0,642  %;  dan  sebanyak  100  %  ikan  hidup  pada  konsentrasi  ekstrak
0,946 % dan 1,396 %.  Setelah dipulihsadarkan (dibugarkan) selama 30  menit dalam media air laut, kondisi ikan mulai membaik dan mulai normal.  Ikan-ikan lainnya tidak menunjukkan tanda-tanda kehidupan.
Selama  pengemasan  12  jam,  didapatkan  sebanyak  53,33  %  ikan  hidup  pada konsentrasi  ekstrak  0,295  %  dan  0,435  %;  sebanyak  86,66  %  ikan  hidup  pada konsentrasi  0,643  %;  dan  100  %  ikan  hidup  pada  konsentrasi  0,946  %;  dan  73,33  % ikan  hidup  pada  konsentrasi  ekstrak  1,396  %.    Setelah  dibugarkan  selama  30  menit ikan mulai berenang aktif.
Berdasarkan  data  tersebut  didapatkan  kesimpulan  bahwa  imotilisasi  dengan menggunakan  bahan  anestetik  ekstrak  ganggang  laut  dapat  dilakukan  dengan memasukkan  ikan  pada  media  air  laut  yang  telah  dicampur  ekstrak  pada  konsentrasi kurang dari 1 % selama 30 menit.  Ketahanan hidup ikan dengan cara pembiusan pada konsentrasi  0.946  %  selama  30  menit  mencapai  6  -  12  jam  dengan  tingkat kelangsungan hidup 100 %.

## 3) Pangamatan parameter kualitas air
Parameter  kualitas  air  yang  diamati  meliputi  suhu,  pH,  salinitas,  DO  dan amonia.  Kondisi   kualitas    air    media   uji   kerapu  lumpur  berturut-turut  adalah suhu  28-29 0 C,  nilai  pH  7,3-7,6,  salinitas  35-37 o / oo ,  DO  5,54-7,96  ppm,  dan  amonia 0.01561  sampai  0.04531  ppm.    Kisaran  tersebut  masih  dalam  ambang  layak  untuk kelangsungan  hidup  kerapu,  seperti  yang  dikemukakan  oleh  Mansyur et  al, (1994) yaitu kisaran kualitas air yang dapat memperpanjang pertumbuhan optimal bagi kerapu adalah  suhu  24-32 o C,  pH  6,5-8,0,  salinitas  25-37 o / oo ,  DO  4-8  ppm  dan    amonia 0,0012 -0,05628 ppm.

## KESIMPULAN DAN SARAN
Ekstrak Caulerpa  sertularioides dapat  mematikan  50%  populasi  ikan  kerapu dengan kepadatan 5 ekor (300 – 350 g/ekor) per 25 liter air  laut pada tingkat konsentrasi 0,646 % dalam  waktu 24  jam.   Daya toksisitas ekstrak media air akan  menurun  menjadi setengah kali dalam waktu 8 jam 14 menit.
Ekstrak Caulerpa  sertularioides pada  konsentrasi  0,295%,  0,435%,  0,646%, 0,946% dan 1,396% dapat memingsankan 50% ikan kerapu dengan kepadatan 5 ekor ikan (300  – 350 g/ekor) per 25  liter  media air  laut, masing-masing dalam waktu 18,27  menit, 18,01 menit, 15,19 menit,  11,81 menit dan 10,71 menit.  Pada kisaran konsentrasi tersebut semua ikan kerapu dapat pulih sadar secara keseluruhan dalam waktu 10 – 30 menit.
Ekstrak Caulerpa  sertularioides sebagai  bahan  anestetik  dapat  digunakan  sebagai zat  pembius  dalam  penanganan  dan  transportasi  kerapu  hidup  dengan  media  tanpa  air. Pembiusan dan transportasi kerapu  hidup dengan  media tanpa air.  Pembiusan  ikan pada konsentrasi 0,946% - 1,396% selama 30 menit dapat dilakukan untuk transportasi kerapu selama tidak lebih dari 12 jam dengan tingkat kelulusan hidup 100%.
Penelitian  lebih  lanjut  diperlukan  untuk  melengkapi  komponen  transportasi komoditi  perikanan  hidup,  disertai  uji  coba  dilapangan  sehingga  didapat  paket teknologi penanganan  dan  transportasi  komoditi  perikanan  hidup  untuk  tujuan  ekspor,  yang  dapat diterapkan oleh industri pengolahan hasil perikanan.

## UCAPAN TERIMA KASIH
Ucapan  terima  kasih  kami  sampaikan  kepada  Direktur  Pembinaan  Penelitian  dan Pengabdian  pada  Masyarakat  Ditjen  Dikti  Depdikbud  atas  pendanaan  penelitian  ini melalui Proyek Penelitian Hibah Bersaing V.

## DAFTAR PUSTAKA
American Public Health Association (APHA). 1976. Standard Method for Examination of Water and Wastewater. 14 th Edition. Amer. Public Health Asc., New York.
Berka, R. 1986. The Transport of Live  Fish.  A  Review . EIFAC Tech. Pap., FAO (48) : 52p.
Hubert, J J. 1990. Bioassay. 2 nd Edition. Department of Mathematics and Statistics.
Komisi  Pestisida.  1983.  Pedoman  Umum  Pengujian  Laboratorium  Toksisitas  Letal Pestisida pada Ikan untuk Keperluan Pendaftaran. Departemen Pertanian. Jakarta.
Prasetyo. 1993. Kajian Kemasan Dingin untuk Transportasi Udang Hidup Secara Kering. Thesis  pada  Jurusan  Teknologi  Pangan  dan  Gizi,  Fak.  Teknologi  Pertanian  IPB. Bogor.
Quinn,  R  J.  1988.  Chemistry  of  Aqueous  Marine  Extracts:  Isolation  Techniques  in Bioorganic Marine Chemistry, Vol. 2. Springer – Verlag Berlin Heidelberg.
Rachmaniar.  1991.  Toksin  Marin  Suatu  Pengantar.  Majalah  Oseana  Vol.  XVI,  No.  1. LON-LIPI. Jakarta.
Subashingshe, S. 1997. Live Fish Handling and Transportation. INFOFISH International 2 : 39 – 43.
Suseno,  D.  1985.  Tehnik  Penanganan  Transportasi  Ikan  Hidup.  Pusdiklatluh  Pertanian Ciawi. Bogor.