## Research Articles
Isolasi  dan  aktivitas  antibakteri  jamur  endofit  pada  mangrove Sonneratia alba dari Tanjung Carat Kabupaten Banyuasin Sumatera Selatan

## Anna Heirina, Rozirwan*, Muhammad Hendri
Jurusan Ilmu Kelautan FMIPA, Universitas Sriwijaya, Inderalaya, Indonesia
Received 16 Desember 2019; Accepted 15 Januari 2020; Published 20 Januari 2020
Keyword: Antibacterial ; Endophytic Fungi ;
S. alba ABSTRACT: S. alba is a mangrove that is commonly found on the east coast of Banyuasin.  Endophytic  fungus  can  produce  a  functional  compound  e.g antibacterial. The purpose of this study is to determine the type, the increase in diameter of colonies and the antibacterial potential in endophytic fungus of S. alba. The research method used were by the isolation of endophytic fungus from leaf, stem and root, the identification of endophytic fungus, the measurement of colony diameter in endophytic fungus and antibacterial activity test using paper disc method. The results of this study found the two genera of endophytic fungus with  four  species  of Aspergillus  sp 1., Aspergillus  sp 2., Paecilomyces  sp 1.,  and Paecilomyces sp 2. The increase in diameter for each colony of endophytic fungus shows  the  difference  every  day.  These  four  types  of  endophytic  fungus  are resistant to bacteria E. coli and S. aureus . Aspergillus sp 2. endophytic fungus has the highest inhibitor potency of 14.49 mm in E. coli bacteria. The endophytic fungus Paecilomyces sp 2. inhibits bacterial growth of S. aureus with the highest inhibitory  potency  of  11.61  mm.  @2020  Published  by  UP2M,  Faculty  of Mathematics and Natural Sciences, Sriwijaya University
Kata Kunci: Antibakteri; Jamur endofit;
S. alba
ABSTRAK: S.  alba merupakan  mangrove  yang banyak  ditemukan  di  pesisir Timur Banyuasin. Jamur endofit dapat menghasilkan senyawa yang fungsional salah  satunya  berupa  senyawa  antibakteri.  Penelitian  ini  bertujuan  untuk mengetahui  jenis,  pertambahan  diameter  koloni  dan  potensi  antibakteri  dari jamur  endofit  pada S.  alba .  Metode  penelitian  yang  digunakan  dengan  cara isolasi  jamur  endofit  dari  bagian  daun,  batang  dan  akar,  identifikasi  jamur endofit,  pengukuran  pertambahan  diameter  koloni  jamur  endofit  dan  uji aktivitas  antibakteri  menggunakan  metode  kertas  cakram.  Hasil  penelitian didapatkan dua genus jamur endofit dengan empat spesies yaitu Aspergillus sp1., Aspergillus sp2., Paecilomyces sp1. dan Paecilomyces sp2. Pertambahan diameter masing-masing  koloni  jamur  endofit  berbeda  setiap  harinya.  Keempat  jenis jamur  endofit  ini  memiliki  daya  hambat  pada  bakteri  uji  yaitu E.  coli dan S. aureus . Jamur endofit Aspergillus sp2. memiliki daya hambat tertinggi sebesar 14,49 mm pada bakteri E. coli . Jamur endofit Paecilomyces sp2. menghambat pertumbuhan bakteri S. aureus dengan daya hambat tertinggi 11,61 mm. @2020 Published  by  UP2M,  Faculty  of  Mathematics  and  Natural  Sciences,  Sriwijaya University

## Jurnal Penelitian Sains
Journal Home Page: http://ejurnal.mipa.unsri.ac.id/index.php/jps/index
DOI: https://doi.org/10.26554/jps.v22i1.552
ISSN:  2597-7059  Online,  1410-7058  print/  @2020  Published  by  UP2M,  Faculty  of  Mathematics  and  Natural Sciences, Sriwijaya University

## 1. PENDAHULUAN
Mangrove  memiliki  beberapa  manfaat seperti  manfaat  ekologi  dan  ekonomi.  Hutan mangrove  sebagai  ekosistem  utama  yang memberikan manfaatnya bagi kehidupan biota di wilayah  pesisir  dengan  memberikan  fungsi ekologis  dan  juga  bermanfaat  bagi  kehidupan manusia.  Menurut  [10]  hutan  mangrove merupakan komunitas vegetasi pantai tropis yang hidup  di  perairan  berlumpur  dan  dipengaruhi oleh  adanya  pasang  surut  air  laut.  Kawasan mangrove  yang  terdapat  di  Sumatera  Selatan terletak  pada  Kabupaten  Banyuasin.  Kabupaten Banyuasin merupakan bagian wilayah administrasi  Provinsi  Sumatera  Selatan  yang memiliki kawasan pesisir yang luas [1].
Menurut [4] menyatakan bahwa mangrove merupakan tumbuhan yang mengandung banyak senyawa bioaktif. Senyawa bioaktif tersebut dapat berasal  dari  mikroorganisme  yang  mensintesis senyawa  bioaktif  mirip  dengan  senyawa  yang dihasilkan  oleh  inangnya.  Menurut  [8],  kulit batang  dari  mangrove  jenis S.  alba berpotensi memiliki  sumber  antibakteri  alami.  Antibakteri merupakan suatu senyawa yang dapat menghambat pertumbuhan bakteri tertentu [18].
Menurut  [24],  mengemukakan  mikroba endofit mampu memproduksi senyawa metabolit sekunder  sesuai  dengan  tanaman  inangnya.  Hal ini  dapat  dimanfaatkan  untuk  memproduksi metabolit  sekunder  dari  mikroba  endofit  yang diisolasi  dari  tanaman  inangnya  sehingga  tidak perlu  dilakukan  penebangan  untuk  diambil sebagai simplisia yang kemungkinan memerlukan waktu  puluhan  tahun  tumbuhan  tersebut  dapat dipanen.  Menurut  [22]  jamur  endofit  dapat menghasilkan senyawa yang fungsional. Senyawa yang  dihasilkan  jamur  endofit  dapat  berupa antikanker,  antivirus,  antibakteri,  antifungi, hormon  pertumbuhan  tanaman,  insektisida  dan lain sebagainya.
Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui jenis jamur endofit yang terdapat pada mangrove S.  alba,  m engukur  laju  pertumbuhan  diameter jamur  endofit  pada  mangrove S.  alba dan mengetahui  aktivitas  antibakteri  jamur  endofit yang terdapat mangrove S. alba.

## 2. METODE PENELITIAN

## 2.1 Waktu dan Tempat
Penelitian ini dilaksanakan pada bulan Juni 2016-Maret  2017  di  Laboratorium  Bioekologi Kelautan  jurusan  Ilmu  Kelautan,  Laboratorium Mikrobiologi Jurusan Biologi Universitas Sriwijaya dan  Laboratorium  Jamur  Balai  Karantina  Ikan dan  Pengendalian  Mutu  (BKIPM)  Kelas  II Palembang.  Pengambilan  sampel  (daun,  batang dan  akar)  mangrove  jenis S.  alba dilakukan  di Tanjung  Carat  Kabupaten  Banyuasin  Sumatera Selatan.
Gambar 1. Peta Lokasi Pengambilan Sampel

## 2.2 Prosedur Penelitian

## 2.2.1 Pengambilan dan Persiapan Sampel
Pengambilan  sampel  (daun,  batang  dan akar) mangrove jenis S. alba dilakukan di kawasan Tanjung  Carat.  Pengambilan  sampel  dilakukan secara acak di mana sampel yang diambil dapat mewakili  jenis  mangrove S.  alba yang  terdapat pada  zonasi  yang  sama.  Pengambilan  sampel daun dipilih daun yang sudah cukup tua. Menurut [25]  sampel  diambil  dari  tumbuhan  yang  sehat. Simpan sampel ke dalam cool box untuk menjaga kesegarannya.
Sampel S. alba yang telah didapatkan dari lokasi selanjutnya dicuci hingga bersih menggunakan air laut steril dan larutan etanol 70 %.  Perlakuan  di  laboratorium  yakni  dengan mencuci sampel menggunakan air laut steril dan etanol  70%.  Setelah  dikupas  kulit  bagian  batang dan akar selanjutnya dilakukan pencucian ulang menggunakan air laut steril sebanyak tiga kali [10]. Masing-masing  sampel  yang  telah  dibersihkan kemudian di iris kecil. Sampel S. alba yang telah diiris kecil selanjutnya diambil sebanyak 10 g dari masing-masing  sampel  yakni  daun,  batang  dan
akar.  untuk  selanjutnya  dilakukan  proses penumbuhan jamur endofit menggunakan media PDB yang di shaker selama tujuh hari.

## 2.2.2  Isolasi  Jamur  Endofit  pada  Media
Potato  Dextrose  Broth  (PDB)  dan  Potato Dextrose Agar (PDA)
Isolasi  jamur  endofit  yang  dilakukan  pada penelitian ini yakni dengan menggunakan teknik planting . Teknik ini dilakukan dengan meletakkan potongan-  potongan  sampel  pada  media pertumbuhan  [25].  Dalam  penelitian  ini  sampel diiris tipis sebelum dikeringkan pada suhu ruang. Sampel kemudian  dimasukkan pada media  PDB yang  telah  disterilisasi  dengan  perbandingan  1:9 kemudian  di shaker dalam  suhu  ruang  dengan kecepatan 150 rpm selama 4-7 hari atau sampai warna sampel berubah menjadi keruh kecoklatan, modifikasi dari [19].
Tuang  sampel  pada  media  PDB  setelah warna  larutan  media  dan  sampel  berubah menjadi  kecoklatan  ke  dalam  tabung  reaksi sebanyak 6 buah dengan pengencerean 10-1, 10- 2, 10-3, 10-4,10-5 dan 10-6. Isolasi jamur endofit pada tabung dengan pengenceran 10-4,10-5 dan 10-6  dengan  cara  dituang  sebanyak  1  ml  pada masing-masing cawan petri kemudian tambahkan media PDA yang telah disterilisasi berkisar 20 ml sambil digoncang perlahan untuk menghomogenkannya  sampai  media  menjadi padat.  Media  PDA  sebelumnya  ditambahkan kloramfenikol  0,1  g/500ml  yang  berguna  untuk mencegah  kontaminasi  bakteri.  Inkubasi  cawan petri  yang  telah  berisi  media  padat  dan  sampel pada suhu 37oC selama 7 hari [3,14].

## 2.2.3 Karakterisasi Jamur Endofit
Isolat jamur endofit yang telah dimurnikan kemudian dilakukan pengamatan secara makroskopis  dan  mikroskopis.  Pengamatan makroskopis meliputi warna koloni, tekstur koloni dan  pertumbuhan  koloni.  Pengamatan  secara mikroskopis  antara  lain,  hifa  mulai  dari  bersekat atau  tidak  bersekat,  pertumbuhan  hifa  yakni beranting  atau  tidak  beranting  hifa  tersebut, selanjutnya  warna  hifa  yang  gelap  atau  hialin (transparan). Selain hifa ada tidaknya konidia dan bentuk konidia (bulat, lonjong, berantai atau tidak beraturan) dan warna konidia (gelap atau hialin transparan) [26].
Pengamatan mikroskopis dilakukan dengan metode Slide  Culture .  Metode Slide  Culture dilakukan  dengan  cara  meletakkan  potongan media PDA pada kaca preparat yang selanjutnya diolesi  biakan  jamur  endofit.  Kaca  preparat sebelumnya  diletakkan  pada  cawan  petri  steril dengan menggunakan ring U sebagai penyangga. Media  PDA  yang  telah  diolesi  biakan  jamur endofit  kemudian  ditutup  menggunakan cover glass steril.  Teteskan  beberapa  ml  akuades  steril untuk menjaga kondisi cawan agar tetap lembab dan selanjutnya inkubasi selama 5-7 hari dengan suhu  25 0 C.  Biakan  jamur  endofit  yang  tumbuh setelah diinkubasi selama 5-7 hari akan menempel pada cover glass yang menutupi media. Siapkan kaca preparat steril yang telah ditetesi Lactofenol Blue  Cotton .  Ambil  cover  glass  yang  menempel pada  media  PDA  dengan  menggunakan  pinset steril.  Tutup  permukaan Lactofenol  Blue  Cotton dengan mengunakan cover glass kemudian amati pada mikroskop dengan perbesaran 10x, 40x dan 100x, modifikasi dari [2].

## 2.3.4 Identifikasi Jamur Endofit
Identifikasi  jamur  endofit  yang  telah dikarakterisasi  berdasarkan  morfologi  yang meliputi pengamatan makroskopis dan mikroskopis  menggunakan  buku  panduan identifikasi “ Introduction to Food- borne Fungi” [27] dan “ Identifying Filamentous Fungi” [21], sebagai acuan dalam melakukan identifikasi.

## 2.3.5  Laju  Pertumbuhan  Diameter  Jamur Endofit
Pengukuran  laju  pertumbuhan  diameter jamur  endofit  dilakukan  untuk  mengetahui pertambahan diameter koloni jamur. Isolat murni jamur endofit yang telah didapatkan ditumbuhkan pada media PDA. Pengukuran laju pertumbuhan jamur  endofit  ini  dilakukan  dengan  cara mengukur  diameter  koloni  jamur  endofit  secara horizontal  maupun  vertikal.  Cawan  petri  pada media  PDA  dibagi  menjadi  empat  kuadran dengan  satu  titik  tengah  sebagai  titik  awal pengukuran, modifikasi dari [12,16]. Pengukuran pertambahan  diameter  jamur  endofit  dapat dihitung menggunakan rumus:
𝐷 = 𝑑1+𝑑2 2 ………………………………(1)
Dimana; (D) adalah dimana  diameter horizontal jamur endofit (d1) ditambahkan dengan diameter vertikal jamur endofit (d2) dibagi dua [20].

## 2.3 Uji Aktivitas Antibakteri

## 2.3.1 Persiapan Kultur dan Ekstraksi Jamur Endofit
Isolat  jamur  endofit  yang  yang  tumbuh pada  media  PDA  diambil  sebanyak  tiga  kali menggunakan  jarum  ose  ke  dalam  botol berukuran 1 l yang telah berisi 500 ml media PDB. Proses fermentasi ini dilakukan selama ± 21 hari pada suhu ruang. Modifikasi [10], mengemukakan bahwa ekstraksi hasil dari fermentasi isolat jamur endofit menggunakan pelarut etil asetat sebanyak 500ml dengan perbandingan 1:1 v/v. Pemisahan antara pelarut dan media fermentasi menggunakan corong pemisah. Hasil pemisahan ini  kemudian  dilakukan  ekstraksi  menggunakan rotary evaporator dengan suhu ≤ 40°C.

## 2.3.2 Persiapan Bakteri Uji
Bakteri uji yang telah disiapkan sebelumnya dilakukan  peremajaam  terlebih  dahulu  masing- masing  menggunakan  media  NA.  Peremajaan dilakukan  dengan  menggunakan  metode  gores dan dalam kondisi aseptik. Inkubasi selama 24 jam dengan suhu 37 o C.

## 2.3.3 Uji Antibakteri
Pengujian  aktivitas  antibakteri  dari  ekstrak jamur endofit menggunakan metode Kirby-Baurer atau  metode  cakram  kertas.  Kertas  cakram disterilkan  terlebih  dahulu  sebelum  digunakan. Suspensi  bakteri  uji  yang  telah  disiapkan  pada media NB sebanyak 1 ml kemudian dituang pada cawan petri steril secara aseptik. Tambahkan 10 ml  media  NA  kemudian  digoyangan  secara perlahan sebanyak 10 kali ke kiri  dan 10 kali ke kanan untuk mendapatkan suspensi bakteri yang merata [15].
Ekstrak  jamur  endofit  yang  telah  pekat ditimbang  sebanyak  0,01  gram  kemudian ditambahkan  pelarut  etil  asetat  sebanyak  1  ml untuk  mendapatkan  konsentrasi  10000  ppm. Kertas  cakram  yang  telah  steril  diletakkan  pada
media  NA  yang  telah  ditambahkan  bakteri  uji. Teteskan  ekstrak  jamur  endofit  yang  telah dilarutkan pada permukaan kertas cakram. Kertas cakram sebanyak lima buah masing-masing terdiri dari empat ekstrak jamur berbeda dan satu terdiri dari  kontrol  negatif  yang  hanya  menggunakan larutan  etil  asetat.  Masing  -  masing  jarak  antar kertas  cakram  diataur  agar  tidak  terlalu  dekat. Pengujian dilakukan sebanyak tiga kali pengulangan.  Inkubasi  selama  24  jam  dengan suhu  37oC  kemudian  ukur  diameter  yakni  zona bening  yang  terbentuk  disekitar  kertas  cakram menggunakan jangka sorong Modifikasi [13,15,23].

## 2.4 Analisis Data
Analisis  data  yang  dilakukan  pada penelitian  ini  menggunakan  analisis  deskriptif yang  memberikan  gambaran  secara  umum mengenai isolasi dan potensi jamur endofit. [26], mengemukakan  bahwa  analisa  deskriptif  ini dilakukan dengan mendeskripsikan atau menggambarkan data yang telah terkumpul.

## 3. HASIL DAN PEMBAHASAN

## 3.1 Karakterisasi Jamur endofit

## 3.1.1 Makroskopis Isolat Jamur Endofit
Pengamatan  makroskopis  dapat  dilakukan berdasarkan  kriteria  warna,  permukaan  dan tepian  koloni.  Kriteria  jamur  endofit  yang  sama dianggap  isolat  yang  sama  dan  setiap  isolat berbeda  dipisahkan  menjadi  isolat  tersendiri (Kumala  dan  Fitri,  2008).  Pada  tahapan karakterisasi  secara  makroskopis  hasil  jamur endofit  yang  telah  didapatkan  dimurnikan kembali  berdasarkan  masing-masing  jenis  jamur yang dianggap sama. Berdasarkan kriteria warna dan permukaan jamur terdapat empat jenis jamur endofit  yang  berbeda.  Keempat  jenis  jamur tersebut  masing-masing  diberi  kode  penamaan untuk  mempermudah  proses  identifikasi.  Jenis jamur  endofit  dengan  warna  dan  ciri-ciri  hitam berserabut  (kode  A),  hijau  (kode  B),  putih berbentuk  bulat  (kode  C)  dan  coklat  (kode  D). Hasil  makroskopis  jamur  endofit  dapat  dilihat pada Tabel 1.
Kode Isolat Jamur Teksture Warna A Berserabut tipis Hitam B Memiliki serabut atau benang halus dan seperti bubuk atau tepung Hijau C Halus dan tebal Putih D Berbentuk bulat gepeng dengan tekstur seperti bubuk Coklat 3.1.2 Mikroskopis Isolat Jamur Endofit
Pengamatan  secara  mikroskopis  dilakukan menggunakan  metode Slide  Culture .  Metode  ini dilakukan  bertujuan  untuk  mendapatkan  hasil gambar  yang  optimal  sehingga  mempermudah dalam proses identifikasi. Hasil identifikasi  jamur endofit  yang  telah  dilakukan  pada  empat  isolat jamur  endofit  dapat  diketahui  ciri-ciri  jamur
endofit tersebut sebagaimana dilihat dari hifa dan konidianya.  Menurut  [17]  hifa  merupakan  suatu struktur  fungi  yang  tumbuh  dari  hasil pertumbuhan  spora  dan  konidia.  Hifa  memiliki bentuk tabung yang menyerupai untaian benang panjang.  Hasil  pengamatan  secara  mikroskopis berdasarkan hifa dan konidia jamur endofit dapat dilihat pada Tabel 2.
Tabel 2. Hasil pengamatan mikroskopis hifa jamur endofit pada S. alba
Kode isolat Hifa Ada/ Tidak Konidia Bersekat Berranting Warna Bentuk Warna Ya Tidak Ya Tidak A √ - √ - Transparan Ada Bulat Berantai Gelap B √ - √ - Transparan Ada Bulat Berantai Gelap C √ - √ - Transparan Ada Oval Berantai Gelap D √ - √ - Transparan Ada Oval Berantai Gelap

## 3.2 Laju Pertumbuhan Diameter Jamur Endofit
Laju pertumbuhan diameter jamur endofit dilakukan  untuk  mengetahui  cepat  atau lambatnya  pertambahan  diameter  jamur  endofit tersebut secara umum. Pengukuran ini dilakukan tanpa  perlakuan  khusus  dan  ditumbuhkan  pada suhu  ruang  selama  tujuh  hari  sehingga  dapat
digambarkan  kurva  pertambahan  diameter selama tujuh hari.
Data  hasil  pengukuran  pertambahan diameter  jamur  endofit  yang  didapatkan  selama tujuh hari ini kemudian di rata-ratakan sehingga dapat dibentuk kurva untuk masing-masing jenis jamur endofit. Kurva laju pertumbuhan diameter jamur endofit disajikan pada Gambar 2.
Gambar 2. Kurva Laju Pertumbuhan Diameter Jamur Endofit
Menurut  [17]  kurva  pertumbuhan  fungi mempunyai  beberapa  fase  antara  lain  fase  lag, fase akselerasi, fase eksponensial, fase deselerasi, fase stasioner dan fase kematian dipercepat. Pada kurva  pertumbuhan  jamur  endofit  diatas berdasarkan  pengamatan  yang  telah  dilakukan dapat diketahui bahwa hanya sampai pada tingkat fase  stasioner.  Pada  pengamatan  yang  telah dilakukan  fase  lag  yang  merupakan  fase penyesuaian dengan lingkungan terlihat pada hari pertama  pada  keempat  jenis  jamur  endofit tersebut.  Pertumbuhan  fungi  dipengaruhi  oleh beberapa  faktor  seperti  suhu  dan  pH.  Menurut [17]  kisaran  suhu  pertumbuhan  fungi  penting untuk diketahui. pH suatu substrat sangat penting untuk  pertumbuhan  fungi.  Umumnya  fungi menyukai pH di bawah 7,0.
Jamur  endofit  jenis Aspergillus sp1. merupakan  jenis  jamur  yang  memiliki  tipe pertumbuhan  yang  cepat.  [4]  mengemukakan bahwa Aspergillus merupakan  jenis  jamur  yang memiliki  tipe  pertumbuhan  yang  cepat. Pertumbuhan jamur Aspergillus sp1. terlihat pada hari kedua meskipun masih dalam kondisi seperti benang halus berwarna putih. Fase eksponensial merupakan  fase  sel  mengalami  perbanyakan jumlah  dengan  aktivitas  sel  meningkat.  Pada Aspergillus sp1.  fase  eksponensial  terlihat  pada hari  ketiga  dengan  rata-rata  pertambahan diameter  mencapai  33,70  mm/hari.  Pada  fase stasioner  untuk  jamur Aspergillus sp1.  terlihat pada  hari  keenam  sampai  ketujuh  dengan  rata- rata pertambahan diameter 89,32-90,00 mm/hari.
Jamur  endofit  jenis Aspergillus sp.  2 merupakan  jenis  jamur  endofit  yang  memiliki warna  hijau  tua  ditandai  dengan  pertumbuhan yang  cepat.  Awal  pertumbuhan  jamur  jenis  ini ditandai  dengan  munculnya  benang  halus berwarna  putih  yang  semakin  lama  menjadi warna  hijau  tua.  Pada  jamur  endofit Aspergillus sp2.  fase  eksponensial  terlihat  pada  hari  ketiga dengan  pertambahan  diameter  37,74  mm/hari. Fase stasioner pada Aspergillus sp2. tidak terlihat selama  tujuh  hari  pengamatan.  Hal  ini  dapat terjadi dikarenakan tipe pertumbuhan Aspergillus sp2. yang cenderung menyebar dengan ditandai seperti bercak kecil.
Jamur endofit Paecilomyces sp1. berwarna putih memiliki pertumbuhan yang terbilang cepat lambat dengan pertambahan luas yang kecil. Tipe jamur  endofit Paecilomyces sp1.  berwarna  putih memiliki tekstur yang tebal sehingga terlihat jamur ini bertumbuh tinggi keatas dengan diameter yang kecil  apabila  dibandingan  dengan  jenis  jamur yang lain. Fase eksponensial pada jamur endofit jenis Paecilomyces sp1.  terlihat  pada  hari  ketiga sampai  hari  ketujuh  dengan  pertambahan diameter  13,57  mm/hari  sampai  38,07  mm/hari. Fase stasioner untuk jamur jenis ini tidak terlihat selama pengamatan.
Jamur  endofit Paecilomyces sp2.  memiliki warna  coklat  dengan  pertumbuhan  yang  cukup cepat.  Jenis  jamur  endofit  ini  tumbuh  melebar hingga  tepi  cawan  petri.  Pada  jamur  endofit Paecilomyces sp2. fase eksponensial terlihat pada hari  ketiga  sampai  hari  keenam  dengan pertambahan  diameter  25,25  mm/hari  sampai
75,21  mm/hari.  Fase  stasioner  pada  jamur Paecilomyces sp2. mulai terlihat pada hari ketujuh dimana  pada  hari  ketujuh  jamur  ini  mencapai diameter tertinggi yakni 90,00 mm/hari.

## 3.3 Aktivitas Antibakteri Jamur Endofit
Kultur jamur endofit yang telah ditumbuhkan  pada  media  PDB  selama  21  hari
dilakukan untuk mendapatkan senyawa metabolit yang  potensial  dalam  menghambat  bakteri  uji. Hasil uji aktivitas antibakteri dari keempat ekstrak jamur  endofit  memperlihatkan  bahwa  semua isolat  dapat mengahambat pertumbuhan bakteri E.  coli dan S.  aureus dengan  zona  hambat  yang cukup besar. Rata-rata diameter zona hambat dari ekstrak jamur endofit disajikan pada Tabel 3.
Tabel 3. Bioaktivitas antibakteri dari ekstrak jamur endofit
Isolat Jamur Zona Hambat (mm) E. coli S. aureus Aspergillus sp1. (A) 9.97 ± 1.42 10.09 ± 0.74 Aspergillus sp2. (B) 14.49 ± 1.71 10.10 ± 2.79 Paecilomyces sp1. (C) 9.40 ± 0.70 10.04 ± 0.78 Paecilomyces sp2. (D) 11.19 ± 2.47 11.61 ± 1.24 Kontrol (-) - - Berdasarkan  Tabel  3  dapat  diketahui bahwa isolat
B mampu menghambat pertumbuhan E.  coli dengan  diameter  zona hambat  tertinggi.  Pada  bakteri S.  aureus ,  isolat yang mampu menghambat dengan diameter zona hambat  tertinggi  yakni  isolat  jamur  D.  Menurut [6][30]  berbedanya  kemampuan  isolat  dalam
menghambat  pertumbuhan  bakteri  uji  dapat disebabkan  karena  jenis  metabolit  antimikroba yang  dihasilkan  setiap  isolat  jamur  endofit berbeda.  Diameter  zona  hambat  isolat  jamur terhadap  bakteri E.  coli dan S.  aureus disajikan pada Gambar 3 dan 4.
Gambar 3. Zona Hambat Jamur Endofit Terhadap Bakteri Escherichia coli
Gambar 4. Zona Hambat Jamur Endofit Terhadap Bakteri Staphylococcus aureus

## 4. KESIMPULAN
Jamur endofit yang berhasil diisolasi yakni terdapat dua genus jamur endofit dengan empat spesies berbeda yaitu Aspergillus sp1., Aspergillus sp2., Paecilomyces sp1. dan Paecilomyces sp2.
Laju  pertumbuhan  diameter  keempat spesies jamur endofit diketahui setelah melakukan pengamatan  selama  tujuh  hari  terlihat  fase pertumbuhannya.  Pada  jamur  endofit  jenis Aspergillus sp.  1  peningkatan  diameter  tertinggi terjadi pada fase eksponensial sebesar 33,70 mm/ hari.  Pada Aspergillus sp.  2  fase  eksponensial terlihat pada hari ketiga. Jamur Paecilomyces sp. 1 mencapai  fase  eksponensial  pada  hari  ketiga sampai ketujuh dan pada jamur Paecilomyces sp2. fase eksponensial terjadi pada hari ketiga sampai keenam.
Aktivitas  antibakteri  dari  ekstrak  jamur endofit  yang  terdapat  pada  mengrove S.  alba menunjukkan  adanya  zona  hambat  yang terbentuk. Jamur endofit Aspergillus sp2. memiliki potensi tertinggi dalam menghambat pertumbuhan  bakteri E.  coli sebesar  14.49  mm. Jamur Paecilomyces sp2.  mampu  menghambat pertumbuhan  bakteri S.  aureus dengan  zona hambat terbesar yaitu 11,61 mm.

## REFERENSI
[1]  [BAPPEDA] Badan Perencanaan Pembangunan  Daerah  Banyuasin.  2013.
Profil Desa Pesisir Kab. Banyuasin . Banyuasin : BAPEDDA.
[2]  [BKIPM]  Balai  Karantina  Ikan  Pengendalian Mutu dan Keamanan Hasil Perikanan. 2014. Instruksi  Kerja  Metode  Pengujian  Jamur . Palembang: Balai Karantina Ikan
Pengendalian  Mutu  dan  Keamanan  Hasil Perikanan
[3] Benson HJ. 2001. Microbiological Applications A Laboratory Manual in General Microbiology . Boston (US): The McGraw−Hill.
[4]  Mukhlis  DK,  Rozirwan  R,  Hendri  M.  2018. Isolasi dan aktivitas antibakteri jamur endofit pada  mangrove  Rhizophora  apiculata  dari kawasan mangrove Tanjung Api-Api Kabupaten  Banyuasin  Sumatera  Selatan. Maspari Journal 10(2): 151-160.
[5] Faraknimella TL, Bara R, Wowor PM, Posangi J.  2015.  Uji  Efek  Antibakteri  Jamur  Endofit Akar  Tumbuhan  Bakau  ( Sonneratia  alba )
Terhadap Bakteri Staphylococcus aureus dan Escherichiae coli . Jurnal e-Biomedik. 3(3).
[6]  Putri  RR,  Rozirwan  R,  Agustriani  F.  2018. Isolasi  dan  identifikasi  jamur  simbion  pada karang  lunak  Sinularia  polydactyla  di perairan Pulau Tegal dengan menggunakan media yang berbeda. Jurnal Penelitian Sains. 20(1): 9-20.
[7] Harahab N. 2010. Penilaian Ekonomi Ekosistem Hutan  Mangrove  dan  Aplikasinya  Dalam Perencanaan  Wilayah  Pesisir .  Yogyakarta: Graha Ilmu.
[8]  Herawati  N,  Jalaluddin  N,  Daha  L,  Zenta  F. 2009. Sonneratia  alba sebagai  sumber senyawa  antibakteri  pontensial. Indonesia Chemica Acta. 2(2): 10-16. Jakarta : Yayasan Pustaka Obor Indonesia.
[9] Kaharap AD, Mambo C, Nangoy E. 2016. Uji efek  antibakteri  ekstrak  batang  akar  kuning ( Arcangelisia  flava Merr.)  terhadap  bakteri Staphylococcus  aureus dan Escherichia  coli. Jurnal e-Biomedik . 4(1).
[10] Kjer J, Debbab A, Aly AH, Proksch P. 2010. Methods  for  isolation  of  marine-derived endophytic  fungi  and  their  bioactive secondary  products. Nature  protocols. 5(3): 479-490.
[11] Kumala S, Fitri NA. 2008. Penapisan kapang endofit ranting kayu meranti merah ( Shorea balangeran Korth.)  sebagai  penghasil  enzim xilanase. Ilmu Kefarmasian Indonesia . 6(1): 1- 6.
[12] Miyashira C, Tanigushi D, Gugliotta A, Santos D. 2010. Comparison of radial growth rate of the  mutualistic  fungus  of  Atta  sexdens rubropilosa  forel  in  two  culture  media. Brazilian Journal of Microbiology. 41(2): 506- 511.
[13] Noverita FD, Sinaga E, Nasional FBU, Manila JS, Pejaten PM, Selatan J. 2009. Isolasi dan uji  aktivitas  antibakteri  jamur  endofit  dari daun  dan  rimpang  Zingiber  ottensii  Val. J
Farmasi Indonesia. 4: 171-176.
[14]  Posangi  J,  Bara  RA.  2014.  Analisis  aktivitas dari  jamur  endofit  yang  terdapat  dalam tumbuhan  bakau Avicennia  marina di  Tasik Ria Minahasa. Jurnal Pesisir dan Laut Tropis. 1(1): 30-38.
[15]  Rozirwan  R,  Hendri  M,  Apri  R.  2018a. Endophyte  microbial  characteristic  of  soft corals  Lobophytum  sp  and  Sinularia  sp collected from Maspari Island waters, South Sumatera. Indonesian Journal of
Environmental  Management  Sustainability. 2(1): 20-23.
[16]  Risdianto  H,  Setiadi2  T,  Suhardi  SH, Niloperbowo  W.  2007.  Pemilihan  Spesies Jamur dan Media Imobilisasi Untuk Produksi Enzim  Ligninolitik. Prosiding  Seminar Nasional Rekayasa Kimia dan Proses.
[17]  Roosheroe  IG,  Sjamsuridzal  W,  Oetari  A. 2014. Mikologi : Dasar dan Terapan.
[18]  Rosyidah  K,  Nurmuhaimina  SA,  Komari  N, Astuti  MD.  2010.  Aktivitas  antibakteri  fraksi saponin  dari  kulit  batang  tumbuhan  Kasturi ( Mangifera casturi ). Alchemy . 1(2): 53-103.
[19] Rozirwan R, Bengen DG, Zamani NP, Effendi H,  Chaidir  C.  2014.  Screening  on  the potential bioactive compounds of antibacterial  activity  in  soft  coral  collected from  south  Bangka  Island  waters  and Lampung  Bay.  Jurnal  Ilmu  dan  Teknologi Kelautan Tropis. 6(2): 283-295.
[20]  Sitanggang  JM,  Siregar  EBM,  Batubara  R. 2016. Respon Phaeophleospora sp. terhadap fungisida  berbahan  aktif  metiram  secara  in vitro. Peronema  Forestry  Science  Journal . 5(3): 147-152
[21]  St-Germain  G,  Summerbell  R.  1996. Identifying  Filamentous  Fungi .  Belmont, California USA: Star Publishing Company.
[22] Strobel G, Daisy B. 2003. Bioprospecting for microbial  endophytes  and  their  natural products. Microbiology and molecular biology reviews. 67(4): 491-502.
[23] Zakiyah A, Radiastuti N, Sumarlin LO. 2015. Aktivitas  antibakteri  kapang  endofit  dari tanaman  Kina  ( Cinchona  caliyasa Wedd.). Jurnal Biologi . 8(2): 51-58
[24]  Rozirwan  R,  Iskandar  I,  Hendri  M,  Apri  R, Azhar  N.  2018b.  Antibacterial  Activity  as Inhibitors  Pathogen  Bacterial  on  Pond Shrimp  of  Extract  Marine  Biota  Collected From  Maspari  Island,  South  Sumatera, Indonesia.  Jurnal  Ilmu  dan  Teknologi Kelautan Tropis. 10(3): 617-627.
[25]  Suciatmih.  2015.  Diversitas  Jamur  Endofit Pada  Tumbuhan  Mangrove  di  Pantai Sampiran  dan  Pulau  Bunaken,  Sulawesi Utara. Pros Sem Nas Masy Biodiv Indon. 1(2): 177-183.
[26] Puspita YD, Sulistyowati L, Djauhari S. 2013. Eksplorasi  Jamur  Endofit  Pada  Tanaman Jeruk  (Citrus  sp.)  Fusiprotoplas  Dengan Ketahanan Berbeda Terhadap Botriodiplodia theobromae  Pat. Jurnal  Hama  dan  Penyakit Tumbuhan. 1(3).
[27]  Samson  RA,  Hoekstra  ES,  Frisvad  JC, Filtenborg  O.  1995. Introduction  To  Food- Borne  Fungi .  Netherlands:  Centralbureau Voor Schimmelcutures.
[28] Rahayu S, Rozirwan R, Purwiyanto AIS. 2019. Daya  hambat  senyawa  bioaktif  pada mangrov Rhizophora sp. Sebagai antibakteri dari  perairan  Tanjung  Api-Api,  Sumatera Selatan. Jurnal Penelitian Sains 21 (3): 151- 162.
[29]  Renaldi  R,  Rozirwan  R,  Ulqodry  TZ.  2017. Bioaktivitas senyawa bioaktif pada mangrove Avicennia marina dan Bruguiera gymnorrhiza  sebagai  antibakteri  yang diambil dari Pulau Payung dan Tanjung Api- api. Maspari Journal. 10(1): 73-80.
[30] Rozirwan R, Bengen DG, Zamani NP, Effendi H.  2015.  Bacterial  symbiont  bioactive compound of soft coral Sinularia flexibilis and S.  polydactyla.  Jurnal  Ilmu  dan  Teknologi Kelautan Tropis. 7(2): 465-478.