## ANTIBACTERIAL ACTIVITY OF MORINGA LEAVES EXTRACT AGAINST Pseudomonas aeruginosa
Erma Yunita, Dheanissa Galuh Permatasari, Deni Lestari
Akademi Farmasi Indonesia Yogyakarta Jalan Veteran Gang Jambu, Kebrokan, Pandeyan, Umbulharjo, Yogyakarta
Korespondensi: Erma Yunita (ermayunita@afi.ac.id)

## ARTICLE HISTORY
Received: 31 May 2020 Revised: 14 August 2020                Accepted: 18 August 2020

## Abstract
Moringa leaves are a plant that has many health benefits. Some of them mention that Moringa  leaves  have  antibacterial  activity.  This  study  aims  to  determine  the antibacterial activity of Moringa oleifera Lam leaf extract against P. aeruginosa bacteria. The  test  group  consisted  of  5  groups variations  in  the  concentration  of  Moringa  leaf extract 2%, 4%, 6%, 8%, and 10%, a positive control group, and negative control. An antibacterial activity test was carried out using the wells diffusion method. Incubation was  carried  out  at  37˚C  for  24  hours.  Observations  are  made  by  measuring  the diameter of the inhibition zone. The results of the antibacterial activity test of Moringa leaf extract against P. aeruginosa bacteria showed an inhibition zone at a concentration of ≥4%. The highest inhibition zone value was obtained at a concentration of 10% with an average inhibition zone diameter of 19.60 ± 0.67 mm. The results of phytochemical screening showed that Moringa leaf extract contained flavonoids, saponins, terpenoids and  tannins.  Based  on  the  results  obtained,  it  can  be  concluded  that  Moringa  leaf extract has antibacterial activity against P. aeruginosa bacteria..
Key words: Antibacterial, Moringa oleifera, Pseudomonas aeruginosa

## AKTIVITAS ANTIBAKTERI EKSTRAK DAUN KELOR TERHADAP Pseudomonas aeruginosa

## Abstrak
Daun kelor merupakan tanaman yang memiliki banyak manfaat dibidang kesehatan. Beberapa  diantaranya  menyebutkan  bahwa  daun  kelor  memiliki  aktivitas  sebagai antibakteri. Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui aktivitas antibakteri ekstrak daun kelor ( Moringa oleifera Lam) terhadap bakteri P. aeruginosa. Kelompok uji terdiri dari 5 kelompok perlakukan variasi konsentrasi ekstrak daun kelor 2%, 4%, 6%, 8% dan 10%, kelompok kontrol positif, dan kontrol negatif. Uji aktivitas antibakteri dilakukan secara metode  difusi sumuran.  Inkubasi  dilakukan  pada  suhu  37˚C  selama  24  jam. Pengamatan  dilakukan  dengan  mengukur  diameter  zona  hambat.  Hasil  uji  aktivitas antibakteri  ekstrak  daun  kelor  terhadap  bakteri P.  aeruginosa menunjukkan  adanya zona  hambat  pada  konsentrasi ≥ 4%.  Nilai  zona  hambat  tertinggi  diperoleh  pada konsentrasi  10%  dengan  rata-rata  diameter  zona  hambat  19,60±0,67  mm.  Hasil skrining  fitokimia  menunjukkan  bahwa  ekstrak  daun  kelor  mengandung  flavonoid, saponin,  terpenoid  dan  tanin.  Berdasarkan  hasil  yang  diperoleh  dapat  disimpulkan bahwa  ekstrak  daun  kelor  memiliki  aktivitas  sebagai  antibakteri  terhadap  bakteri P.
aeruginosa. Zona hambat yang terbentuk semakin besar seiring dengan peningkatan konsentrasi ekstrak.
Kata kunci: Antibakteri, Moringa oleifera, Pseudomonas aeruginosa

## Pendahuluan
Penggunaan  tanaman  obat  sebagai  bahan  alami  untuk  penyembuhan  infeksi semakin  banyak  dipilih  oleh  masyarakat  karena  efek  sampingnya  relatif  kecil 1 . Tanaman yang dapat digunakan sebagai obat dan banyak dibudidayakan di Indonesia, adalah tanaman kelor ( Moringa oleifera Lam) 2 . Daun kelor mengandung berbagai zat kimia  yang  bermanfaat.  Hasil  penelitian  sebelumnya  dikatehui  bahwa  ekstrak  daun kelor memiliki daya hambat terhadap bakteri Staphylococcus aureus dan Escheria coli yang resisten terhadap antibiotik 3,4 .
Pseudomonas  aeruginosa merupakan  bakteri  yang  dapat  menyebabkan  infeksi pada luka bakar, infeksi telinga dan luka setelah operasi 5 (Rahmadani, 2015). Bakteri P.  aeruginosa merupakan  bakteri  patogen  oportunistik  yang  dapat  menyebabkan keadaan yang invasif pada pasien dengan penyakit kritis maupun pasien yang memiliki tingkat imunitas yang sangat rendah 6 . Umumnya bakteri ini sering ditemukan sebagai penyebab  infeksi  nosokomial  di  Rumah  Sakit.  Penelitian  yang  dilakukan  di  Rumah Sakit Moewardi Surakarta diketahui bahwa bakteri penyebab infeksi nosokomial yaitu Enterobacter sp., Pseudomonas sp ., dan Proteus sp . 7 . Bakteri P. aeruginosa yang diuji termasuk  dalam  kriteria  yang  resisten  terhadap  antibiotika  amoksisilin,  eritromisin, serta  kloramfenikol,  namun  masih  memiliki  kriteria  sensitif  terhadap  antibiotika siprofloksasin 6 .
Berdasarkan uraian yang telah dipaparkan, maka perlu dilakukan uji aktivitas daun kelor  sebagai  alternatif  antibakteri  berbasis  bahan  alam  terhadap  bakteri P. aeruginosa .  Hasil  penelitian  ini  diharapkan  dapat  memberikan  gambaran  dalam pengembahan antibakteri dengan memanfaatkan daun kelor sebagai bahan aktif.

## Metode

## Alat
Alat yang digunakan dalam penelitian ini yaitu cawan petri disposable (Labware), timbangan  digital  (Icis  3000  series),  autoklaf,  spider,  borer,  konikal  (onemed),  jarum ose, pinset, bunsen, incubator (Memert), Encase, Hot Plate, mikropipet (Sciloget Smart Gen-Net),  jangka  sorong,  alat-alat  gelas  (Iwaki)  seperti  beaker,  erlenmeyer,  tabung reaksi dan kaca arloji.

## Bahan
Bahan-bahan  yang  digunakan  dalam  penelitian  ini  adalah  ekstrak  etanol  daun kelor  yang  diperoleh  dari  penelitian  Fatimah  pada  tahun  20198,  isolat  bakteri  P. aeruginosa  ATTC  27853  yang  diperoleh  dari  Balai  Laboraturium  Kesehatan  dan Kalibrasi  Yogyakarta,  Nutrient  Agar  (Oxoid),  Siprofloksasin  (PT.  Quantum  Labs), akuades steril (PT. IKA Pharmindo), gelatin serta bahan kimia seperti n-heksan, HCl, NaCl, etanol, serbuk Mg, reagen Dragendroff, dan reagen Liebermann-Burchard.

## Prosedur
1.  Uji Penapisan Fitokimia
a.  Uji Flavonoid
Ekstrak  daun  kelor  ditambahkan  100  mL  air,  dididihkan  selama  5  menit, kemudian  disaring.  Filtrat  sebanyak  0,5  g  ditambahkan  serbuk  Mg  dan 1  mL  HCl  pekat,  kemudian  dikocok  kuat.  Uji  positif  ditunjukkan  dengan terbentuknya warna merah-jingga pada filtrat 9 . b.  Uji Saponin
Ekstrak daun kelor ditambahkan 10 mL air sambil dikocok selama 1 menit, lalu ditambahkan  2  tetes  HCl  1  N.  Bila  busa  yang  terbentuk  tetap  stabil  selama  7 menit, maka ekstrak positif mengandung saponin 9 . c.  Uji Steroid dan Terpenoid
Ekstrak  dilarutkan  dalam  heksan,  dikocok  perlahan  dan  dibiarkan  selama beberapa  menit.  Fase  terlarut  heksan  dipisahkan  dan  ditambahkan  reagen Liebermann-Burchard.  Adanya  steroid  akan  membentuk  lapisan  cincin  warna biru atau hijau, sedangkan terpenoid memberikan warna merah atau ungu 9 . d.  Uji Alkaloid
Sampel sebanyak 3 mL diletakkan dalam cawan porselin kemudian ditambahkan 5 mL HCl 2 M, diaduk dan kemudian didinginkan pada temperatur ruang. Setelah dingin ditambahkan 0,5 g NaCl lalu dilakukan pengadukan dan disaring. Filtrat yang diperoleh ditambahkan HCl 2M sebanyak 3 tetes, lalu ditambahkan reagen Dragendroff.  Terbentuknya endapan jingga  pada  tabung menunjukkan  adanya alkaloid 9 . e.  Uji Tanin
Sebanyak  1 mL  ekstrak  ditambahkan  dengan  sedikit  larutan  gelatin  dan  5  mL NaCl 10%. Reaksi positif apabila terbentuk endapan kekuningan 9 . 2.  Uji Aktivitas Antibakteri Secara Difusi Sumuran
Uji  aktivitas  antibakteri  terhadap  bakteri P.  aeruginosa dilakukan  dengan menggunakan  media Nutrient  Agar (NA).  Stok  media  yang  telah  siap  kembali dilakukan sterilisasi menggunakan autoklaf dengan suhu 121˚C selama 15 menit. Langkah  selanjutnya  adalah  pembuatan  suspensi  bakteri  uji  dengan  mengambil satu ose bakteri murni kemudian ditanamkan dalam NA yang langsung diinkubasi selama 24 jam dengan suhu 37˚C. Suspensi bakteri dibuat dengan membandingkan kekeruhan menggunakan standar Mc. Farland 0,5. Selanjutnya, pembuatan media uji  dan  pembuatan  sumuran  yang  dilakukan  secara pour  plate .  Media  NA  yang sudah  dingin  dan  suspensi  bakteri  uji  sebanyak  20  µL  ditambahkan  secara bersamaan,  kemudian  media  NA  dibiarkan  hingga  memadat,  selanjutnya  dibuat sumuran menggunakan borrer 6 mm. Langkah berikutnya menambahkan  ekstrak daun kelor sebanyak 20 µL/sumuran pada lubang sumuran dengan konsentrasi 2%, 4%, 6%, 8%, dan 10% serta kontrol positif siprofliksasin 5µg/sumuran dan kontrol pelarut etanol 70% sebanyak 20 µL/sumuran. Inkubasi dilakukan pada suhu 37˚C selama 24 jam 10 . Pengamatan dilakukan dengan mengukur diameter zona hambat menggunakan  jangka  sorong.  Diameter  hambat  adalah  besarnya  diameter pengukuran dikurangi diameter sumuran 11 .

## Hasil
1.  Hasil Uji  Penapisan  Fitokimia
Penapisan fitokimia terhadap ekstrak daun kelor meliputi pemeriksaan flavonoid, saponin, steroid, terpenoid, alkaloid, dan tannin. Hasil uji penapisan fitokimia ekstrak daun kelor tersaji pada Tabel 1.
Tabel 1. Hasil Penapisan Fitokimia Ekstrak Daun Kelor Pengujian Pereaksi Hasil Uji Keterangan Flavonoid HCl pekat + Logam Mg  Larutan merah tua Positif Saponin Uji busa Terbentuk busa Positif Steroid Liebermann-Burchard Larutan berwarna coklat Negatif Terpenoid Liebermann-Burchard Larutan berwarna coklat kemerahan Positif Alkaloid Dragendorff Endapan jingga Positif Tanin NaCl 2% + Gelatin 1% Terbentuk endapan Positif
Hasil  uji  pada  Tabel  I  menunjukkan  bahwa  dalam  ekstrak  etanol  daun  kelor terkandung senyawa flavonoid, saponin, alkaloid, terpenoid dan tanin.
2.  Hasil Uji Aktivitas Antibakteri Daun Kelor Aktivitas  antibakteri  daun  kelor  terhadap P.  aeruginosa dilakukan  dengan mengukur zona hambat yang terbentuk setelah diinkubasi selama 24 jam dapat dilihat pada Tabel 2.
Tabel 2. Daya Hambat Ekstrak Daun Kelor Terhadap Bakteri P. aeruginosa
Keterangan:
EDK
: Ekstrak Daun Kelor Tanda (-) : Tidak terbentuk zona hambat Kontrol Positif : Siprofloksasin 5 µg Kontrol Pelarut : Etanol 70%
*kategori berdasarkan CLSI 2012
Hasil diameter zona hambat yang diperoleh dibandingkan dengan standar perfoma antibiotik siproflokasin dari Clinical and Laboratory Standard Institute (CLSI) 2012 12 , dimana  interpretasi  daya  hambat  dikategorikan  berdasarkan  besaran  nilai  dimater zona hambat. Nilai zona hambat ≤ 15 mm dikategorikan resisten, zona hambat 16-20 mm dikategorikan intermediet dan zona hambat ≥ 21 mm dikategorikan sensitif 12 .

## Pembahasan
Penapisan fitokimia dilakukan untuk mengetahui komponen senyawa kimia pada ekstrak daun kelor. Dilakukan enam uji yaitu uij flavonoid, saponin, steroid, terpenoid, alkaloid,  dan  tannin.  Hasil  penapisan  fitokimia  ekstrak  daun  kelor  ditampilkan  pada Tabel  I.  Ekstrak  didapatkan  melalui  maserasi  menggunakan  pelarut  etanol  70% 8 . Pemilihan  metode  ekstraksi  dapat  mempengaruhi  kandungan  senyawa  metabolit sekunder  yang  dapat  tersari 13 .  Berdasarkan  uji  penapisan  fitokimia  yang  sudah
Kelompok Uji Diameter Zona Hambat (mm) X ± SD Kategori * EDK 2% 0±0 - EDK 4% 13,93±0,14 Resisten EDK 6% 13,68±0,38 Resisten EDK 8% 18,60±0,66 Intermediet EDK 10% 19,60±0,67 Intermediet Kontrol Positif 27,01±0,80 Sensitif Kontrol Pelarut 0±0 -
dilakukan,  diketahui  bahwa  dalam  ekstrak  etanol  daun  kelor  terkandung  senyawa flavonoid, saponin, alkaloid, terpenoid dan tannin. Penelitian lainnya menyebutkan jika kandungan  fitokimia  dalam  daun  kelor  diantaranya  tanin,  steroid  dan  triterpenoid, flavonoid, saponin, antarquinon, dan alkaloid serta mengandung mineral, asam amino esensial, antioksidan, dan vitamin 14 .
Uji  aktivitas  antibakteri  ekstrak  daun  kelor  dilakukan  dengan  metode  difusi sumuran menggunakan bakteri P.  aeruginosa. Kelompok  uji  antibakteri  terdiri  dari  5 kelompok perlakukan ekstrak daun kelor dengan variasi konsentrasi 2%, 4%, 6%, 8% dan  10%,  kontrol  positif  siprofloksasin,  kontrol  pelarut  etanol  70%.  Jumlah  volum larutan uji yang dimasukkan dalam tiap sumuran adalah 20 µL. Inkubasi dilakukan pada suhu  37°C  selama  24  jam 10 .  Replikasi  dilakukan  sebanyak  3  kali.  Hasil  uji  aktivitas antibakteri  ekstrak  daun  kelor  dapat  dilihat  pada  Tabel  II.    Kelebihan  metode  difusi sumuran  yaitu  lebih  mudah  mengukur  zona  hambat  yang  terbentuk  dikarenakan sampel beraktivitas tidak hanya dipermukaan atas NA tetapi juga sampai ke bawah 15 . Metode ini juga dapat menghasilkan zona hambat yang lebih baik karena adanya daya osmolaritas pada lubang sumuran 16 . Berdasarkan data pada Tabel II dapat diketahui bahwa ekstrak daun kelor responsif terhadap bakteri P. aeruginosa.
Penggunaan siprofloksasin sebagai kontrol positif didasarkan sensitivitas antibiotik tersebut terhadap bakteri P. aeruginosa 6,12 . Kontrol positif siprofloksasin menunjukkan adanya aktivitas antibakteri yang ditandai dengan adanya zona hambat yang terbentuk di sekitar lubang sumuran setelah diinkubasi selama 24 jam pada su hu 37˚C dengan diameter  zona  hambat  rata-rata  27,01±0,80  mm.  Kepekaan  antibiotik  siprofloksasin terhadap  bakteri P.  aeruginosa dapat  diinterpretasikan  sensitif 12 .  Etanol  70%  yang digunakan  sebagai  kontrol  pelarut  menunjukkan  tidak  adanya  aktivitas  antibakteri, ditandai dengan tidak terbentuknya zona hambat di sekitar sumuran. Hasil uji aktivitas antibakteri  ekstrak  daun  kelor  menunjukkan  adanya  aktivitas  antibakteri  terhadap pertumbuhan P. aeruginosa pada konsentrasi ≥ 4%, sedangkan pada konsentasi 2% tidak  menunjukkan  adanya  zona  hambat  (Tabel  II).  Hal  ini  menggambarkan  bahwa pada konsentrasi 2%, ekstrak daun kelor belum memberikan efek sebagai antibakteri. Nilai  diameter  zona  hambat  ekstrak  daun  kelor  yang  dihasilkan  pada  penelitian  ini hanya pada rentang 13,68-19,60 mm, dimana interpretasi masih berada pada kategori resisten-intermediet 12 .  Hal  ini  terjadi  karena  konsentrasi  tertinggi  ekstrak  daun  kelor yang digunakan pada penelitian ini masih cukup kecil. Kenaikan zona hambat seiring dengan  peningkatan  konsentrasi  ekstrak  daun  kelor  memberikan  gambaran  bahwa konsentrasi  yang  lebih  tinggi  lagi  memungkinkan  untuk  menghasilkan  zona  hambat yang lebih tinggi.
Kemampuan  daya  aktivitas  antibakteri  ekstrak  daun  kelor  terhadap  bakteri P. aeruginosa dikarenakan adanya kandungan kimia dalam ekstrak daun kelor. Senyawa flavonoid  dan  tanin  diketahui  dapat  menghambat  pertumbuhan  bakteri  Gram  positif maupun  Gram  negatif 17 .  Daun  kelor  yang  diekstraksi  menggunakan  pelarut  etanol dapat  menarik  sebagian  besar  senyawa  aktif  yang  berada  di  daun  kelor  tersebut, sehingga ekstrak dapat menghambat bakteri yang sedang mengalami pertumbuhan. Hal ini dapat terjadi karena senyawa metabolit sekunder yang ada di daun kelor seperti flavonoid, alkaloid dan senyawa fenolik lainya 18 .

## Kesimpulan
Berdasarkan hasil penelitian dikatahui bahwa ekstrak etanol daun kelor memiliki aktivitas  anitibakteri  terhadap  bakteri  auroginosa P.  aeruginosa pada  konsentrasi ≥ 4%.  Kemampuan  daya  aktivitas  antibakteri  ekstrak  daun  kelor  dikarenakan  adanya kandungan senyawa flavonoid, alkaloid, saponin, tannin dan terpenoid.

## Ucapan Terima Kasih
Terima  kasih  kepada  Lembaga  Penelitian  dan  Pengabdian  Kepada  Masyarakat Akademi  Farmasi  Indonesia  Yogyakarta  yang  telah  mendanai  penelitian  ini  dalam program Hibah Penelitian Dosen Anggaran Tahun 2020.

## Daftar Pustaka
1. Faradiba  A,  Gunadi  A,  Praharani  D.  Daya  Antibakteri  Infusa  Daun  Asam  Jawa terhadap  Streptococcus  mutans.  Pustaka  Kesehatan.  2016:4(1);55-60. https://jurnal.unej.ac.id/index.php/JPK/article/view/2496
2. Anwar F, Latif S, Ashraf M, Gilani AH. Moringa oleifera: A food plant with multiple medicinal uses. Phytotherapy Research. 2007:21(1);17-25.
https://doi.org/10.1002/ptr.2023
3. Dima  LLRH,  Fatimawali,  Widya  AL.  Uji  aktivitas  antibakteri  ekstrak  daun  kelor (Moringa oleifera L.) terhadap bakteri Escherichia coli dan Staphylococcus aureus. Pharmacon. 2006:5(2);282-289.
4. Purnasari, Cahyani. Uji Aktivitas Antibakteri Ekstrak Etanol Daun Kelor (Moringa oleifera  Lam.)  terhadap  Bakteri  Patogen Resisten  Antibiotik  [Skripsi].  Makassar: Program Universitas Hasanuddin; 2013.
5. Rahmadani,  Fitri.  Uji  Aktivitas  Antibakteri  dari  Ekstrak  Etanol  96%  Kulit  Batang Kayu  Jawa  (Lannea  coromandelica)  Terhadap  Bakteri  Staphylococcus  aureus, Escherichia coli, Helicobacter pylori, Pseudomonas aerugin osa [Skripsi]. Jakarta: Fakultas Kedokteran dan Ilmu Kesehatan UIN Syarif Hidayatullah; 2015.
6. Putri AA, Rasyid R, Rahmatini R. Perbedaan Sensitivitas Kuman Pseudomonas aeruginosa Penyebab Infeksi Nosokomial Terhadap Beberapa Antibiotika Generik dan Paten. Jurnal Kesehatan Andalas, 2014:3(3);327-331.
https://doi.org/10.25077/jka.v3i3.112
7. Raihani,  Nadia.  Profil  Kultur  dan  Uji  Sensitivitas  Bakteri  Aerob  dari  Infeksi  Luka Operasi  Laparatomi  di  Bangsal  Bedah  RSUP  DR.  M.  Djamil  Padang  [Artikel]. Padang: Program Pascasarjana Universitas Andalas; 2011.
8. Fatimah, Siti. Validasi Metode Analisis dan Penetapan Kadar Kuersetin Daun Kelor (Moringa oleifera) [Karya Tulis Ilmiah]. Yogyakarta : Akademi Farmasi Indonesia Yogyakarta; 2019.
9. Harborne, J B. 1996. Metode Fitokimia. Edisi kedua. ITB: Bandung.
10.  Budiana SM, Kojong NS, Wewengkang DS. Uji Aktivitas Antibakteri Ekstrak Etanol Bunga  Dan  Biji  Tanaman  Pacar  Air  (Impatiens  Balsamina  L.)  Terhadap Pertumbuhan  Bakteri  Staphylococcus  Aureus,  Pseudomonas  aeruginosa  dan Escherichia Coli Secara In-Vitro. Pharmacon. 2015:4(4);214-223.
11.  Jagessar  RC,  Mohamed  A,  Gomes  G.  An  Evaluation  of  the  Antibacterial  AND antifungal  Activity  of  Leaf  Extract  of  Momordica  charantia  Against  Candida
Vol. 11; No. 2; Juli 2020 Halaman 189-195
albicans,  Staphylococcus  aureus  and  Escherichia  coli.  Nature  and  Science. 2008:6(1); 1-14.
12.  CLSI.  Performance  Standars  for  Antimicrobial  Susceptybility  Testing;  Twenty- Second  Infromational  Supplement.  CLSI  document  M100-S22.  Wayne,  PA: Clinical Laboratory Standards Institute; 2012.
13.  Muchsin,  I.  Perbandingan  Metode  Pembuatan  Ekstrak  Daun  Artocarpus  altilis (Park.)  Fosberg  Secara  Maserasi  dan  Infundasi  Berdasarkan  Kadar  Flavonoid Total [Disertasi]. Yogyakarta: Universitas Gadjah Mada, Yogyakarta; 2014.
14.  Hardianti,  F.  Pemanfaatan  Aktivitas  Antioksidan  Ekstrak  Daun  Kelor  (Moringa oliefera) Dalam Sediaan Hand and Body Cream [Skripsi]. Jakarta: Program Studi Kimia UIN Syarif Hidayatullah; 2015.
15.  Haryati  SD,  Darmawati  S,  Wilson  W.  Perbandingan  Efek  Ekstrak  Buah  Alpukat (Persea americana Mill) terhadap Pertumbuhan Bakteri Pseudomonas aeruginosa dengan Metode Disk dan Sumuran. Prosiding Seminar Nasional Publikasi Hasil- Hasil  Penelitian  dan  Pengabdian  Masyarakat:  Implementasi  Penelitian  dan Pengabdian Masyarakat Untuk Peningkatan Kekayaan Intelektual. 2017:348-352.
16.  Prayoga, Eko. Perbandingan Efek Ekstrak Daun Sirih Hijau (Piper betle L) dengan Metode  Difusi  Disk  dan  Metode  Sumuran  terhadap  Pertumbuhan  Bakteri Staphylococcus  aureus  [Tesis].  Jakarta:  Universitas  Islam  Negri  Syarif Hidayatullah; 2013.
17.  Yuliana SR, Leman MA, Anindita PS. Uji Daya Hambat Senyawa Saponin Batang Pisang  (Musa  paradisiaca)  terhadap  Pertumbuhan  Candida  albicans.  e-GiGi, 2015:3(2); 616-620. https://doi.org/10.35790/eg.3.2.2015.10486
18.  Pandey A, Pandey RD, Tripathi P, Gupta PP, Haider J, Bhatt S, Singh AV. 2012. Moringaoleifera  Lam.  (Sahijan) –  A  plant  with  a  plethora  of  diverse  therapeutic benefits: an update retrospection. Medicinal and Aromatic Plants.  2012:1(1);1-8. http://dx.doi.org/10.4172/map.1000101