## KARAKTERISTIK DAN SENYAWA FENOLIK MIKROKAPSUL EKSTRAK DAUN KELOR

## ( Moringa oleifera) DENGAN KOMBINASI MALTODEKSTRIN DAN WHEY PROTEIN ISOLAT
CHARACTERISTIC AND PHENOLIC COMPOUNDS OF MORINGA LEAF EXTRACT MICROCAPSULES (Moringa oleifera) WITH A COMBINATION OF MALTODEXTRIN AND WHEY PROTEIN ISOLATE
Iis Sadiah* ) , Rossi Indiarto, dan Yana Cahyana
Program Studi Teknologi Pangan, Fakultas Teknologi dan Industri Pertanian, Universitas Padjadjaran, Jalan Raya Bandung-Sumedang Kilometer 21, Jatinangor 45363, Indonesia
E-mail: iis20001@mail.unpad.ac.id
Makalah: Diterima 28 Oktober 2022; Diperbaiki 6 Desember 2022; Disetujui 15 Desember 2022

## ABSTRACT
Moringa leaves (Moringa oleifera) have bioactive components such as phenolic compounds, which have antioxidant activity and are beneficial for health, such as preventing free radicals, anticancer and antidiabetic. Bioactive ingredients from Moringa leaves have weaknesses namely, they are sensitive to heat, light, and oxygen, so an encapsulation process is needed to minimize the loss of bioactive compounds in the extract. This study aimed to determine the effect of coating ingredients from maltodextrin and Whey Protein Isolate with ratios (1:3 and 3:1) on  the  characteristics  of  Moringa  leaf  extract  microcapsules.  This  research  is  descriptive  research  with  three repetitions. Dried moringa leaves were extracted using ethanol solvent with the Ultrasound-Assisted Extraction (UAE)  method.  The extract  obtained  was  encapsulated  and  spray-dried  at  an inlet  temperature  of  125°C.  The results showed that Moringa leaf extract had a phenolic content of 590.25 ± 1.12 (mg GAE/g), a flavonoid content of 173.96 ± 1.57 mg QE/g and an IC 50 value of 52.74 µg/mL. The combination of maltodextrin and whey protein isolate  (WPI)  coating  materials  with  ratios  (1:3  and  3:1)  produced  yield values  (53.66  ±  2.25  %  and  60.78  ± 4.60%), water content (3.49 ± 0.35 % and 3.73 ± 0.4 %), solubility (95 ± 0.03% and 86 ± 0.08 %), total phenolic (377.21 ± 0.82 mg GAE/g and 349.88 ± 1, 64 mg GAE/g), total flavonoids (101.32 ± 3.36 mg QE/g and 86.35 ± 2.81 mg QE/g), IC 50 (88.22 ± 0.68 µg/mL and 149, 65 ± 4.03 µg/mL) and encapsulation efficiency (63.94% and 59.31%) and the resulting colour leads to a green colour.
Keywords: Moringa leaves, maltodextrin, microcapsules, whey protein isolate

## ABSTRAK
Daun kelor ( Moringa oleifera ) memiliki komponen bioaktif seperti senyawa fenolik yang memiliki aktivitas antioksidan dan bermanfaat untuk kesehatan, seperti mencegah radikal bebas, antikanker, dan antidiabetes. Bahan bioaktif dari daun kelor ( Moringa oleifera) memiliki kelemahan yaitu sensitif terhadap panas, cahaya dan oksigen sehingga dibutuhkan proses enkapsulasi untuk meminimalisir kehilangan senyawa bioaktif dalam ekstrak. Tujuan dari penelitian ini untuk mengetahui pengaruh bahan penyalut dari maltodekstrin dan Isolat Whey Protein dengan rasio (1 : 3 dan 3 : 1) terhadap karakteristik mikrokapsul ekstrak daun kelor. Penelitian ini merupakan penelitian deskriptif  dengan  tiga  kali  ulangan.  Daun kelor  kering diekstraksi  menggunakan pelarut  etanol  dengan metode Ultrasound-Assisted Extraction (UAE). Ekstrak yang diperoleh dienkapsulasi dan dikeringkan dengan pengering semprot ( Spray-drying ) dengan suhu inlet 125 ° C. Hasil penelitian yang diperoleh yaitu ekstrak daun kelor memiliki kandungan fenolik sebesar 590,25 ± 1,12 (mg GAE/g), kadar flavonoid sebesar 173,96 ± 1,57 mg QE/g dan nilai IC 50 52,74 µg/mL. Kombinasi bahan penyalut maltodekstrin dan whey protein isolat (WPI) dengan rasio (1:3 dan 3:1) menghasilkan nilai rendemen (53,66 ± 2,25 % dan 60,78 ± 4,60%), kadar air (3,49 ± 0,35 % dan 3,73 ± 0,4 %), kelarutan (95 ± 0,03% dan 86 ± 0,08 %), total fenolik (377,21 ± 0,82 mg GAE/g dan 349,88 ± 1,64 mg GAE/g), total flavonoid (101,32 ± 3,36 mg QE/g dan 86,35 ± 2,81 mg QE/g), IC 50 (88,22 ± 0,68 µg/mL dan 149,65 ± 4,03 µg/mL) dan efesiensi enkapsulasi (63,94% dan 59,31%) serta warna yang dihasilkan mengarah ke warna hijau.
Kata kunci : daun kelor, maltodekstrin, mikrokapsul, whey protein isolate

## PENDAHULUAN
Tanaman kelor ( Moringa oliefera ) merupakan tanaman  perdu    yang  memiliki  senyawa  fenolik berupa  flavonoid,  tannin,  terpenoid,  alkaloid  dan saponin  (Rivai,  2020).  Flavonoid  merupakan komponen  alam  dan  termasuk  salah  satu  golongan fenolat  yang  ditemukan  dalam  kloroplas  tanaman
(Ademiluyi et al ., 2018). Golongan flavonoid dikenal memiliki  aktivitas  antioksidan  tinggi  dan  sangat bermanfaat  untuk  kesehatan  dan  sering  digunakan dalam  industri  obat,  kosmetik,  farmasi  dan nutraceutical. Flavonoid  bersifat  antioksidatif, antikarsinogenik,  anti  mutagenic,  anti  inflamasi  dan mampu  memodulasi  fungsi  enzim  seluler  utama (López, 2020).  Beberapa penelitian melaporkan daun
Jurnal Teknologi Industri Pertanian 32 (3): 273-282, Desember 2022 DOI: https://doi.org/10.24961/j.tek.ind.pert.2022.32.3.273 ISSN: 0216-3160    EISSN: 2252-3901
Terakreditasi Peringkat 2 SK Dirjen Pendidikan Tinggi, Riset, dan Teknologi No. 158/E/KPT/2021 Tersedia online http://journal.ipb.ac.id/index.php/jurnaltin
*Penulis Korespondensi
kelor  ( Moringa  oleifera )  memiliki  efek  antioksidan yang baik bagi tubuh untuk mengatasi dan mencegah stress  oksidatif  pada  berbagai  penyakit  degeneratif (Padayachee and Baijnath, 2020; Mittal et al ., 2017; Rani et al., 2018).
Hasil  penelitian  Nobossé et  al .  (2018) melaporkan  dalam  100  gram  daun  kelor  yang diekstrak  dengan  berbagai  pelarut  menghasilkan kadar total flavonoid sebesar 0,93 – 1,82 g CE/100 g dan  total  fenolik  sebesar  3,20  –  4,02  g  GAE/100  g. Beberapa  peneliti  lain  juga melakukan  pengambilan senyawa  aktif  dengan  berbagai  macam  ekstraksi diantaranya  ekstraksi  daun  basah  menggunakan blender  dengan  pelarut  air  (Fatmawati,  2020; Khasanah et al., 2019), ekstraksi daun kering dengan maserasi menggunakan pelarut etanol (Sohaib et al ., 2021) dan ekstraksi daun kering dengan destilasi air (Shah et al., 2015; Muthukumar et al. , 2014). Namun ekstraksi  daun  kelor  dengan  metode Ultrasound- Assisted  Extraction (UAE)  masih  belum  banyak dilakukan.  Ekstraksi  dengan  metode  UAE  sangat prospektif  karena  menghasilkan  rendemen  lebih tinggi  dan  waktu  pemrosesan  yang  lebih  singkat (Widyasanti et  al .,  2018;  Ling et  al .,  2019),  serta menghasilkan  kandungan  total  flavonoid  yang  lebih baik (Vázquez et al ., 2014; Dadi et al ., 2019; Carrera et  al .,  2012).  Ekstraksi  fenolik  dan  flavonoid  pada tanaman  dengan  metode  UAE  efektif  dilakukan selama 20 menit pada suhu 40 o C (Dadi et al ., 2019). Durasi  ekstraksi  yang  semakin  lama  dengan  suhu lebih  dari  50°C  menyebabkan  degradasi  senyawa biokatif  selama  ekstraksi  berbantuan  ultrasound (Dadi et al ., 2019).
Beberapa peneliti telah memanfaatkan senyawa aktif daun kelor untuk diaplikasikan dalam olahan  pangan  (Fatmawati,  2020;  Khasanah et  al., 2019;  Shah et  al., 2015).  Pemberian  ekstrak  daun kelor dalam olahan pangan menyebabkan penurunan cita  rasa  dari  produk  olahan  pangan  karena  sifat ekstrak yang pahit dan sepat serta mudah terdegradasi akibat  pengaruh  lingkungan  seperti  perubahan  pH, suhu,  cahaya  dan  enzim  (Armendáriz et  al .,  2016) sehingga  diperlukan  proteksi  berupa  enkapsulasi untuk meminimalisir kekurangan tersebut.
Enkapsulasi  merupakan  metode  yang  dapat dilakukan  untuk  menjaga  senyawa  bioaktif  yang terdapat  dalam  ekstrak  tanaman  yang  ditambahkan dalam  olahan  pangan  serta  menjaga  citarasa  olahan pangan  agar  tetap  enak.  Sebagaimana  menurut Zuidam  dan  Nedović  (2010)  teknologi  enkapsulasi dapat  mempertahankan  nutrisi  dan  menutupi  rasa yang tidak diinginkan dari beberapa senyawa bioaktif dalam bahan makanan. Proses enkapsulasi diformulasikan  dengan  bahan-bahan  yang  dapat melindungi  senyawa  bioaktif  suatu zat  yang  disebut sebagai bahan pelapis (Jafari, 2017). Penelitian yang dilakukan oleh  Cornelia et al. (2019); Santoso et al. (2020)  dan Toure et al .  (2007) menyebutkan  bahwa penggunaan maltodekstrin yang digabungkan dengan whey  protein  isolate (WPI)  sebagai  bahan  penyalut
dapat  menutupi  rasa  pahit  serta  dapat  melindungi senyawa  bioaktif  dalam  ekstrak  tanaman. Whey protein isolate dan maltodekstrin memiliki viskositas rendah  pada  konsentrasi  tinggi,  mudah  diproses selama  enkapsulasi  dan  memiliki  potensi  stabilitas yang tinggi dalam mempertahankan senyawa bioaktif pada  bahan  yang  disalut  (Baysan et  al .,  2021; Bannikova et  al .,  2021).    Protein  whey  bersama dengan  maltodekstrin  menghasilkan  kaca  amorf matriks yang bertindak sebagai penghalang terhadap oksidasi (Baysan et al ., 2021).
Ekstraksi daun kelor sudah banyak dilakukan, namun  ekstraksi  daun  kelor  dengan  metode ultrasound yang dilanjutkan dengan proses enkapsulasi masih terbatas. Tujuan dari penelitian ini yaitu  mengetahui  rasio  bahan  penyalut  dari maltodekstrin  dan whey  protein  isolate dalam menghasilkan kandungan total fenolik dan antoksidan yang  lebih  efektif  dalam  pembuatan  mikrokapsul ekstrak daun kelor.

## METODE PENELITIAN

## Bahan dan Alat
Bahan  yang  digunakan  dalam  pembuatan ekstrak  yaitu  daun  kelor  yang  diperoleh  dari  petani kelor  di  Garut  -  Jawa  Barat,  dan  etanol  70%  yang diperoleh di toko kimia BACLS, Ciseke  - Bandung. Bahan yang digunakan dalam pembuatan mikrokapsul  ekstrak  daun  kelor  yaitu  maltodekstrin DE  10-15  merk  Lihua  Starch  yang  diperoleh  dari Toko  Padjar  Kimia  Bogor,  Whey  Protein  Isolate (WPI) merk Whey Protein Isolate 90 yang diperoleh di toko Farzanashop Bandung, dan aquades diperoleh di toko kimia BACLS, Ciseke - Bandung.
Alat  yang  digunakan  dalam  proses  ekstraksi yaitu  Qsonica-Q500 dan Buchi rotary evaporator R- 300.  Sedangkan  alat  yang  digunakan  untuk pembuatan  mikrokapsul  ekstrak  daun  kelor  yaitu spray drying (Buchi B-290) .

## Ekstraksi Daun Kelor
Senyawa  aktif  daun  kelor  diambil  dari  daun yang sudah dikeringkan pada suhu 40 o C. Berdasarkan penelitian yang dilakukan oleh Vongsak et al . (2013), total  fenolik  dan  flavonoid  dari  ekstrak  daun  kelor kering lebih tinggi dibandingkan dengan ekstrak daun basah.  Pembuatan  serbuk  daun  kelor  mengacu  pada Yunianti  (2020).  Daun  kelor  segar  dikeringkan menggunakan food  dehydrator pada  suhu  45°C selama 5 hingga 6 jam. Daun kelor dihaluskan dengan grinder  dan  disaring  menggunakan  ayakan  80  mesh sampai  diperoleh  serbuk.  Serbuk  daun  kelor diekstraksi  dengan  pelarut  etanol  70%  dengan perbandingan 1 : 10 (Vongsak et al ., 2013). Ekstraksi dilakukan  menggunakan  UAE  (merk  QSonica-500) selama  20  menit,  amplitudo  65%,  25kHz, pulse on/pulse  off 10  sec.  Daun  kelor  yang  sudah diekstraksi  kemudian  disaring  dan    dievaporasi selama 5-6 jam pada suhu 40°C.

## Enkapsulasi Ekstrak Daun Kelor
Proses enkapsulasi dilakukan dengan modifikasi  dari  (Cornelia et  al .,  2019;  Hasna et  al ., 2018; Bannikova et al ., 2021). Bahan penyalut yang terdiri  dari  maltodekstrin  dan  WPI  dengan perbandingan  1:3  (M1W3)  dan  3:1  (M3W1) ditambahkan  aquades  sampai  volume  500  ml  dan diaduk  menggunakan magnetic  stirrer sampai homogen  kurang  lebih  selama  10  menit,  kemudian ditambahkan  ekstrak pekat  daun  kelor  sebanyak  5% dari  total  bahan  penyalut  dan  diaduk  kembali menggunakan magnetic  stirrer  selama  60  menit  dan disimpan  selama  12  jam  dalam  lemari  dingin. Selanjutnya  dilakukan  ultrasonikasi  pada  daya  160 W,  frekuensi  20  kHz  dengan  pulsa  50%  selama  15 menit dan  dilakukan pengeringan mengunakan spray drying dengan suhu inlet 125°C dan suhu outlet 60°C.

## Analisis Kadar Air dan Kelarutan
Kadar  air  dianalisis  menggunakan  metode termogravimetri  (AOAC,  1995).  Cawan  yang  akan digunakan  sebagai  wadah  sampel  dioven  terlebih dahulu hingga bobotnya konstan. Serbuk mikrokapsul sebanyak  1  g  dimasukkan  ke  dalam  cawan  dan dipanaskan  pada  suhu  105°C  selama  3  jam  dalam oven.    Cawan  kemudian  dimasukkan  ke  dalam desikator  selama  15  menit  dan  ditimbang  hingga konstan.  Kadar  air  sampel  dinyatakan  sebagai persentase  jumlah  air  yang  menguap  terhadap  berat awal  sampel,  sedangkan  kelarutan  mikrokapsul dilakukan dengan (Gravimetri).

## Analisis Total Fenolik
Kandungan  total  fenolik  dianalisis  dengan beberapa modifikasi dari metode yang dilakukan oleh Pedro et  al .  (2016).  Sampel  sebanyak  10  mg dilarutkan  kedalam  25  mL  pelarut  metanol.  Sampel sebanyak  0,5  mL  kemudian  ditambahkan  2,5  mL Follin-  Ciocalteu  10%  (v/v).  Selanjutnya  sampel disimpan  selama  5  menit  dan  ditambahkan  2  mL Na 2 CO 3 (sodium karbonat) 7,5%. Larutan dihomogenkan  kembali  dan  diinkubasi  selama  15 menit   pada  shu  45 0 C  dalam  waterbath.  Pengukuran serapan  kandungan  total  fenol  dilakukan  pada panjang gelombang 725 nm menggunakan spektofotometer UV-Vis. Kandungan fenolik ditanyatakan  berdasar  kurva  standar  asam  galat  dan diekspresikan  dalam  satuan  mg  ekuivalen  asam galat/g  ekstrak  (mg  GAE/g  ekstrak)  dengan  rumus perhitungan :
𝑇𝑜𝑡𝑎𝑙 𝐹𝑒𝑛𝑜𝑙𝑖𝑘 = 𝑎 𝑥 𝑉/1000
𝐺 Keterangan:
a  = konsentrasi asam galat (mg/L);
V = volume larutan uji (mL);
G = massa sampel (g);
1000 =  faktor  koreksi  terhadap  volume  total larutan (mL).

## Analisis Total Flavonoid
Kandungan flavonoid total dianalisis menggunakan  metode  (Ling et  al .,  2019)  dengan modifikasi.  Buat  larutan  kurva  baku  quercetin  200 ppm  lalu  dilakukan  serial  pengenceran  hingga didapatkan  konsentrasi  (0,  2,  4,  6,  8,  10,  12  ppm). Sampel  sebanyak  1 mL  ditambahkan  3 mL  metanol dan 0,2 mL AlCl 3 10%. Kemudian didiamkan selama 1  menit  dan  ditambahkan  0,2  mL  CH3COOK  1  M kemudian dihomogenkan. Tepatkan dengan aquades hingga 10 mL kemudian dihomogenisasi menggunakan  vortex.  Larutan  kemudian  diinkubasi selama  30  menit  pada  suhu  25°C.  Kemudian dilakukan  pengukuran  absorbansi  menggunakan spektrofotometer  pada  panjang  gelombang  415  nm dengan  akua  distilata  sebagai  blanko.  Penetapan kadar  flavonoid  yang  terdapat  dalam  sampel ditentukan berdasar kurva standar kuersetin menggunakan persamaan garis regresi linier y= ax+b. Hasilnya  dinyatakan  sebagai  mg  QE/g  berat  kering dengan rumus perhitungan :
𝑇𝑜𝑡𝑎𝑙 𝐹𝑙𝑎𝑣𝑜𝑛𝑜𝑖𝑑 = 𝑐 𝑥 𝑉 𝑥 𝑓𝑝

## 𝑚
Keterangan: c = kesetaraan quersetin (mg/L) ; V = volume sampel (L); fp = faktor pengenceran ; m = massa sampel (g).

## Efesiensi Enkapsulasi
Efisiensi  enkapsulasi  adalah  rasio  total kandungan  fenol  terenkapsulasi  (Ek)  terhadap  total kandungan  fenol  larutan  sebelum  enkapsulasi  (Et). Penentuan  efisiensi  enkapsulasi  (%)  dilakukan menurut Isailović et al . (2012).
𝐸𝑓𝑒𝑠𝑖𝑒𝑛𝑠𝑖 𝐸𝑛𝑘𝑎𝑝𝑠𝑢𝑙𝑎𝑠𝑖 = 𝐸𝑘 𝐸𝑡 𝑥100%

## Aktivitas Antioksidan
Aktivitas  antioksidan  diukur  menggunakan metode  DPPH  (Hsu et  al .,  2008)  dengan  sedikit modifikasi.  Larutan  DPPH  dengan  konsentrasi  160 ppm  dilarutkan  dalam  25  mL  methanol  p.a.  96%. Larutan  control  dibuat  dengan  mencampur  larutan DPPH  0,5  mL  ditambah  metanol  2  ml.  Sampel ekstrak dibagi menjadi 5 seri konsentrasi, yaitu 160. 80; 40; 20 ppm dan 10 ppm. Sampel yang diekstraksi dari  konsentrasi  ini  dibuat  hingga  2,5  mL  dengan menambahkan  metanol  dan  0,5  mL  larutan  DPPH. Sampel diinkubasi pada suhu 250 °C selama 30 menit dan  dianalisis  absorbansinya  terhadap  DPPH menggunakan spektrofotometer UV-Vis pada panjang gelombang 517 nm. Nilai laju penghambatan (aktivitas  antioksidan)  untuk  radikal  bebas  DPPH dihitung dengan menggunakan rumus berikut:
% 𝑖𝑛ℎ𝑖𝑏𝑖𝑠𝑖
= 𝐴𝑏𝑠𝑜𝑟𝑏𝑎𝑛𝑠𝑖 𝑘𝑜𝑛𝑡𝑟𝑜𝑙 − 𝐴𝑏𝑜𝑟𝑏𝑎𝑛𝑠𝑖 𝑠𝑎𝑚𝑝𝑒𝑙
𝐴𝑏𝑠𝑜𝑟𝑏𝑎𝑛𝑠𝑖 𝑘𝑜𝑛𝑡𝑟𝑜𝑙 𝑥 100%
Konsentrasi  hambat  (IC 50 )  ditentukan  secara  grafis menggunakan  plot  nilai  hambat  dan  konsentrasi ekstrak.  Persamaan  regresi  linier  yang  dihasilkan berbentuk  y  =  bx  +  a  dan  persamaan  linier  yang dihasilkan  digunakan  untuk menghitung konsentrasi hambat 50% (IC 50 ).

## Warna
Penentuan  warna  didasarkan  pada  penelitian yang dilakukan oleh Jiménez-González and Guerrero-Beltrán (2021) menggunakan alat chromameter CR-400.

## Analisis Data
Teknik  analisis  data  yang  digunakan  yaitu deskriptif ( explanatory research ), yaitu menganalisis, menggambarkan dan meringkas hasil penelitian yang diperoleh    di  laboratorium.    Penelitian  dianalisis sebanyak tiga kali ulangan.

## HASIL DAN PEMBAHASAN

## Karakteristik Ekstrak Daun Kelor
Pada penelitian ini, simplisia daun kelor yang diekstraksi memiliki kadar air sebesar 2,76%. Adapun hasil  penelitian  ekstrak  daun  kelor  disajikan  pada Tabel 1.
Tabel  1.  Rendemen  dan  karakteristik  kimia  ekstrak daun kelor Karakteristik Nilai Rendemen (%) 17,14 ± 1,32 Kadar Air (%) 10,79 ± 0,79 Total Fenolik (mg GAE/g) 590,25 ± 1,12 Flavonoid (mg QE/g) 173,96 ± 1,57 IC 50 (µg/mL) 52,74 ± 0,11
Keterangan  :  Nilai  rata-rata  berdasarkan  tiga  kali ulangan

## Rendemen Ekstrak Daun Kelor
Rendemen yang diperoleh yaitu sebesar 17,14 ±  1,32%.  Nilai  rendemen  yang  diperoleh  pada penelitian  ini  lebih  besar  dibandingkan  dengan rendemen  ekstrak  daun  kelor  yang  diperoleh  pada penelitian Alegantina et al . (2010) yang mengasilkan rendemen sebesar 15,59%. Perbedaan nilai rendemen dapat  disebabkan  metode  ekstraksi  yang  berbeda dimana  pada  penelitian  ini  ekstraksi  dibantu menggunakan  UAE  sedangkan  ekstraksi  yang dilakukan  oleh  Alegantina et  al .  (2010)  dilakukan dengan metode  maserasi.  Hasil  ekstraksi  UAE  yang lebih  tinggi  juga  dikaitkan karena  efek  mekanis  dan pecahnya  dinding  sel  sehingga  meningkatkan penetrasi  pelarut  kedalam  sel  (Carrera et al .,  2012). Vázquez et  al .  (2014)  dan  Dadi et  al .  (2019)  juga melaporkan bahwa UAE memberikan hasil ekstraksi 4  kali  lipat  dari  batang  rubiacae  dibanding  hasil ekstraksi menggunakan sokhlet dan maserasi.

## Kadar Air Ekstrak Daun Kelor
Nilai  kadar  air  yang  diperoleh  pada  hasil penelitian  yaitu  sebesar  10,79  ±  0,79%.  Nilai  yang didapat sedikit melebihi batas nilai yang dipersyaratkan yaitu 10%. Namun nilai kadar air yang dihasilkan lebih kecil dibandingkan dengan kadar air ekstrak  kelor  yang  dihasilkan  oleh    Susanty et  al . (2019). Nilai kadar air pada ekstrak dipengaruhi oleh jenis  pelarut  dan  proses  penguapan  ekstrak. Sebagaimana  menurut  Atisanto et  al. (2017)  suhu pengeringan  dan  jenis  pelarut  berpengaruh  terhadap kadar  air  ekstrak.  Hikmah et  al. (2009)  juga menyebutkan  semakin  tinggi  suhu  yang  digunakan menyebabkan  kandungan  air  yang  dihasilkan semakin  rendah.  Penelitian  yang  dilakukan  oleh Sandy  Atisanto et  al. (2017)  juga  membuktikan bahwa ekstraksi dengan pelarut etanol menghasilkan kadar  air  cukup  tinggi  karena  etanol  70%  bersifat lebih polar dibandingkan dengan etaol 90% sehingga titik didihnya semakin tinggi. Sebagaimana menurut Gomarjoyo et  al .  (2015),  semakin  tinggi  titik  didih pelarut  maka  semakin  lama  proses  penguapan, sedangkan  pada  penelitian,  suhu  yang  digunakan pada proses penguapan ekstrak yaitu sebesar 45 0 C.

## Total Fenolik dan Total Flavonoid Ekstrak Daun Kelor
Ekstrak  daun  kelor  yang  dihasilkan  pada penelitian ini memiliki total fenolik sebesar 590,25 ± 1,12 (mg GAE/g). Hasil fenolik yang diperoleh lebih tinggi  dibandingkan  dengan  hasil  yang  diperoleh Dadi et al . (2019) yaitu sebesar 33,4 ± 1,2  – 46,6 ± 0,3 mg GAE/g, sedangkan kandungan flavonoid yang dihasilkan  dalam  ekstrak  daun  kelor  yaitu  sebesar 173,96 ± 1,57 (mg QE/g). Kandungan flavonoid yang dihasilkan pada penelitian ini lebih tinggi dibandingkan  dengan  kandungan  flavonoid  ekstrak daun kelor yang dihasilkan oleh Vongsak et al . (2013) yaitu  sebesar  6,20  ±  0,48 g  QE/g.  Perbedaan  hasil kandungan fenolik dan flavonoid ekstrak daun kelor dibandingkan  dengan  penelitian  sebelumnya  dapat dipengaruhi  oleh  usia  daun,  metode  ekstraksi,  suhu dan waktu ekstraksi dan pelarut yang digunakan saat ekstraksi.  Dalam  penelitian  ini,  daun  kelor  yang digunakan adalah daun yang sudah tua. Hal ini karena daun  tua memiliki kandungan  fenolik  dan  flavonoid yang  lebih  tinggi  dibandingkan  daun  yang  masih muda (Felicia et al ., 2017). Metode ekstraksi dengan bantuan  ultrasound  dalam  penelitian  ini  juga  dapat berkonstribusi  memberikan  hasil  polifenol  dan flavonoid  yang  lebih  baik  dibandingkan  dengan metode maserasi (Dadi et al ., 2019). Waktu ekstraksi daun  kelor  dengan  metode  UAE  juga  lebih  singkat dibandingkan  ekstraksi  maserasi  sehingga  dapat meminimalisisr  hidrolisis  dan  penguapan  ekstrak (Yuliantari et  al .,  2017).  Selain  itu,  jenis  pelarut etanol  yang  digunakan dalam  penelitian  juga  efektif dalam melarutkan senyawa fenolik ekstrak daun kelor karena bersifat polar (Bakar et al ., 2015).

## Aktivitas Antioksidan Ekstrak Daun Kelor
Aktivitas  antioksidan  ekstrak  daun  kelor ditentukan  berdasarkan  nilai  IC 50 .  IC 50 adalah konsentrasi  larutan  substrat  atau  sampel  yang mengurangi aktivitas  DPPH  hingga  50%.  Nilai IC 50 ekstrak  daun  kelor  yang  dihasilkan  yaitu  sebesar 52,74  ±  0,11  (µg/mL).  Nilai  IC 50 dipengaruhi  oleh kandungan  flavonoid  yang  terdapat  dalam  bahan. Sebagaimana menurut  Pietta  (2000),  semakin  tinggi kandungan  flavonoid  dalam  bahan  maka  nilai aktivitas  antioksidan  akan  semakin  tinggi.  Korelasi antara  flavonoid  dengan  antioksidan  juga  pernah dilakukan  oleh  beberapa  peneliti  (Rubiyanti et  al ., 2019; Fajar et al ., 2018; Yuliantari et al ., 2017).
Karakteristik Mikrokapsul Ekstrak Daun Kelor
Mikrokapsul  ekstrak  daun  kelor  yang dihasilkan  pada  penelitian  ini  dianalisis  meliputi kadar  air,  total  fenolik,  total  flavonoid  dan  aktivitas antioksidan (IC 50 ) sebagaimana disajikan pada Tabel 2.
Tabel  2.  Pengaruh  rasio  bahan  penyalut  terhadap rendemen,  kadar  air  dan  kelarutan mikrokapsul ekstrak daun kelor
Parameter Perlakuan M1W3 M3W1 Rendemen (%) 53,66 ± 2,25 60,78 ± 4,60 Kadar Air (%) 3,73 ± 0,4 3,49 ± 0,35 Kelarutan (%) 95 ± 0,03 91,1 ± 0,07
*M1W3 : Rasio  maltodekstrin : Whey Protein Isolat (1:3) M3W1 : Rasio maltodekstrin : Whey Protein Isolate (3:1)

## Rendemen Mikrokapsul Ekstrak Daun Kelor
Rendemen  yang  dihasilkan  pada  perlakuan M3W1 lebih tinggi dibandingkan dengan M1W3. Hal ini menunjukkan  semakin tinggi rasio  maltodekstrin menyebabkan  rendemen  semakin  tinggi.  Hasil penelitian  ini  sejalan  dengan  hasil  penelitian  yang dilakukan  oleh  Hasna et  al. (2018).  Maltodekstrin memiliki daya ikat yang lebih kuat dalam  mengikat suspensi  dibandingkan  dengan  whey  protein  (Hasna et al ., 2018). Maltodekstrin memiliki viskositas yang lebih rendah  dibandingkan  whey  protein.  Viskositas yang terlalu tinggi menyebabkan penurunan kecepatan  pengeringan  karena  terjadi  pembentukan droplet  yang  besar  dan  panjang  yang  mengganggu proses  atomisasi  sehingga  rendemen  enkapsulan berkurang (Yuliawaty dan Susanto, 2015).

## Kadar Air Mikrokapsul Ekstrak Daun Kelor
Berdasarkan hasil penelitian terhadap mikrokapsul  ekstrak  daun  kelor  diperoleh  kadar  air yaitu  3,49  ±  0,35  %  -  3,73  ±  0,4 %  (wb).  Kadar  air yang dihasilkan pada mikrokapsul ekstrak daun kelor lebih  kecil  dibandingkan  dengan  penelitian  yang dilakukan oleh Hasna et al . (2018) pada mikrokapsul kayu  manis  dan  Purnomo et  al .  (2014)  pada mikrokapsul duan jati. Kadar air yang dihasilkan pada mikrokapsul  ekstrak  daun  kelor  telah  memenuhi
standar produk bubuk berdasarkan SNI 01-4320-1996 yaitu berkisar pada 3-5 %.
Kadar air pada mikrokapsul dipengaruhi oleh bahan  penyalut  yang  digunakan.  Perlakuan  M3W1 memiliki kadar air lebih rendah dibandingkan dengan M1W3.  Berdasarkan    Baysan et  al .  (2021) menyebutkan  bahwa maltodekstrin mempunyai  sifat higroskopis yang rendah sehingga dapat menurunkan kadar  air  mikrokapsul.  Whey  protein  mengandung protein yang memiliki struktur kompleks dan matriks ikatan  yang  kuat  terhadap  air  (Michel et  al .,  2009). Namun  penambahan maltodekstrin  sebagai  penyalut dapat menurunkan kekuatan ikatan matriks terhadap air. Sebagaimana menurut Purnomo et al . (2014) dan Verdiana et  al .  (2018)  menyebutkan  bahwa penambahan  mikrokapsul  sebagai  bahan  penyalut dapat  menurunkan  kadar  air.  Hal  ini  karena penambahan  maltodekstrin  dapat  menigkatkan  total padatan bahan. Berdasarkan Crosby (1989) menyebutkan  bahwa  semakin  tinggi  total  padatan pada  bahan  pangan  yang  dikeringkan  menyebabkan tingginya  kecepatan  penguapan  sehingga  kadar  air menjadi rendah.

## Kelarutan Mikrokapsul Ekstrak Daun Kelor
Kelarutan  merupakan  salah  satu  parameter yang  menentukan  kualitas  produk  bubuk  dan berdampak  pada  pelepasan  bahan  aktif  pada mikrokapsul.  Perakuan  M1W3  memiliki  kelarutan yang  lebih  tinggi  yaitu  95%  dibandingkan  dengan perlakuan M3W1 yaitu 91,1%. Hasil ini memperlihatkan  bahwa  penggunaan  maltodekstrin yang  lebih  sedikit  dibandingkan  whey  protein menyebabkan kelarutan semakin meningkat. Hasil ini sejalan dengan penelitian yang dilakukan oleh (Hasna et al ., 2018; Siregar dan Kristanti, 2019). Penggunaan whey  yang  lebih  banyak  dapat  mempercepat pelarutan  mikroenkapsul  saat  diaplikasikan  pada makanan. Hal ini karena w hey merupakan emulsifier yang  baik  yang  dapat  membantu  peleburan  zat-zat dalam suspense baik fase air ataupun minyak (Keogh dan O’Kennedy, 1999).

## Kadar  Total  Fenolik,  Flavonoid  dan  Aktivitas Antioksidan Mikrokapsul Ekstrak Daun Kelor
Kadar  total  fenolik  yang  dihasilkan  pada mikrokapsul ekstrak daun kelor yaitu sebesar 349,88 ±  1,64  -  377,21  ±  0,82  mg  GAE/g  (Tabel  3)    lebih rendah  dibandingkan  dengan  total  fenolik  ekstrak daun kelor yaitu 590,25 ± 1,12 mg GAE/g (Tabel 1). Begitupula  dengan  kadar  total  flavonoid  yang dihasilkan pada mikrokapsul ekstrak daun kelor yaitu sebesar 86,35 ± 2,81 - 101,32 ± 3,36 QE mg/g lebih rendah  dibandingkan  dengan  total  flavonoid  ekstrak daun kelor yaitu 173,96 ± 1,57. Hal ini dikarenakan pada  proses  enkapsulasi  ekstrak  akan  terjadi perlakuan panas, terpapar cahaya dan oksigen selama pengeringan  semprot  yang  dapat  menurunkan senyawa bioaktif bahan pangan termasuk kandungan
fenolik (Mahdavi et al ., 2016; Siregar dan Kristanti, 2019).
Kandungan  Fenolik  dan  flavonoid  pada perlakuan M1W3 lebih tinggi dibandingkan perlakuan  M3W1.  Penggunaan  whey  yang  lebih banyak  pada  proses  penyalutan  lebih  efektif  dalam menjaga  kandungan  bioaktif  yang  terdapat  dalam bahan yang disalut (Bannikova et al., 2021). Protein whey memiliki proteksi yang baik terhadap oksidasi dibandingkan dengan maltodekstrin. Namun penggabungan  whey  protein  dengan  maltodesktrin sebagai  penyalut menjadi lebih  efektif  dalam  proses enkapsulasi karena maltodesktrin dapat menghasilkan kaca  amorf  matriks  yang  bertindak  sebagai penghalang terhadap oksidasi (Baysan et al ., 2021).
Tabel  3.  Pengaruh  rasio  bahan  penyalut  terhadap kandungan total fenolik, flavonoid dan ic 50
mikrokapsul ekstrak daun kelor Parameter Perlakuan M1W3 M3W1 Total Fenolik (mg GAE/g) 377,21 ± 0,82 349,88 ± 1,64 Flavonoid (mg QE/g) 101,32 ± 3,36 86,35 ± 2,81 IC 50 (µg/mL) 88,22 ± 0,68 149,65 ± 4,03 Aktivitas antioksidan yang diperoleh dinyatakan  dalam  IC 50 .  Aktivitas  antioksidan tergolong  sangat  kuat  jika  memiliki  nilai  IC 50 <50 ppm,  tergolong  kuat  antara  50-100  ppm,  sedang antara 100-150 ppm dan lemah antara 150-200 ppm (Rumagit et  al., 2015).    Mikrokapsul  ekstrak  daun kelor memiliki nilai IC 50 yang berkisar pada 88,22 ± 0,68 – 149,65 ± 4,03 ppm. Nilai IC 50 yang dihasilkan lebih rendah dibandingkan dengan nilai  IC 50 ekstrak daun  kelor  yaitu  52,74  ±  0,11  ppm.  Penurunan kandungan  antioksidan  mikrokapsul  ekstrak  daun kelor  disebabkan  karena  proses  pengolahan  selama enkapsulasi  ekstrak.  Namun  penurunan  nilai antioksidan  tidak  terlalu  tinggi    dan  masih  berada pada golongan antioksidan kuat sehingga berpotensi untuk diaplikasikan pada bahan pangan.
Nilai  aktivitas  antioksidan  pada  perlakuan M1W3  lebih  tinggi  dibandingkan  dengan  perlakuan M3W1. Hal ini berkaitan dengan kandungan senyawa fenolik  dan  flavonoid  yang  dihasilkan  pada  setiap perlakuan.  Perlakuan  M1W3  memiliki  kandungan fenolik  dan  flavonoid  yang  lebih  tinggi  sehingga aktivitas  antioksidannya  lebih  kuat  dibandingkan dengan  perlakuan  M3W1.  Hasil  ini  sejalan  dengan penelitian  yang  dilakukan  oleh  Ballesteros et  al . (2017); Kha et al . (2010) dan Zorić et al . (2017), yang menyatakan bahwa terdapat korelasi antara kandungan  fenolik  dengan  peningkatan  aktivitas antioksidan.

## Efesiensi Enkapsulasi Mikrokapsul Ekstrak Daun Kelor
Efisiensi  enkapsulasi  adalah  perbandingan antara  kandungan  total  fenolik  mikrokapsul  ekstrak daun  kelor  dengan  kandungan  total  fenolik  ekstrak daun  kelor.    Berdasarkan  Gambar  1  dapat  terlihat perlakuan M1W3 memiliki efesiensi lebih besar yaitu 63,94% dibandingkan dengan perlakuan M3W1 yaitu 59,31%.
Gambar  1.  Pengaruh  rasio  bahan  penyalut  terhadap efesiensi mikrokapsul ekstrak daun kelor
Pada  perlakuan  M1W3  penggunaan  whey protein lebih banyak dibandingkan dengan perlakuan M3W1.  Protein  memiliki  kemampuan  yang  baik dalam  mengemas  komponen  bioaktif  (Zhang et  al ., 2021). Sifat pembentuk gel pada protein sangat baik dalam  membentuk  partikel  nano  untuk  enkapsulasi senyawa  bioaktif  (Tang,  2019).  Penggunaan  whey protein  bersama  dengan  maltodekstrin  pada  proses enkapsualsi  menjadi  kombinasi  yang  efektif  dalam menyalut  senyawa  bioaktif.  Hasil  penelitian  ini sejalan  dengan  penelitian  yang  dilakukan  oleh Bannikova et  al. (2021)  dan  Zhang et  al. (2021). Protein  dan  polisakarida  menyediakan  jembatan untuk  memuat  komponen  bioaktif  agar  tetap  ada dalam  matriks  makanan  yang  rumit  (Zhang et  al., 2021).  Secara  umum,  dua  interaksi  utama  antara protein  dan  polisakarida  yaitu  kompleksasi  non- kovalen  dan  interaksi  kovalen.  Ikatan  non-kovalen antara  poliskarida  dengan  protein  menghasilkan keadaan bioadhesive yang memberikan kemungkinan menghasilkan nanomaterial. Sedangkan pada interaksi  kovalen  terbentuk  konjugat  protein  dan polisakarida  yang  membentuk amphiphilicity yang sangat  baik  untuk  merangkum  komponen  bioaktif lipofilik ketika struktur nano dari konjugat terbentuk (Anal et al ., 2019).

## Warna Mikrokapsul Ekstrak Daun Kelor
Pengamatan  warna  pada  serbuk  mikrokapsul ekstrak  daun  kelor  dilakukan  dengan  metode  CIE LAB, dengan menyajikan data berupa L*,a*, b*, Hue dan  Chroma.  Hasil  analisis  warna  ditunjukkan  pada Tabel 4 dan Gambar 2.
56.00 58.00 60.00 62.00 64.00 66.00 M1W3 M3W1 E fe si e ns i E nkap sul as i (%) Perlakuan
Tabel 4. Pengaruh rasio bahan penyalut terhadap L*, a*, b*, Hue dan chroma mikrokapsul ekstrak daun kelor Perlakuan L*(D65) a*(D65) b*(D65) Hue Chroma M1W3 89,89 ± 0,1 2,63 ± 0,02 19,83 ± 0,34 178,56 ± 0,002 20 ± 0,34 M3W1 83,17 ± 0,5 2,46 ± 0,14 27,19 ± 0,98 178,52 ±  0,008 27,3 ± 0,97
Gambar  2. Pengaruh  rasio  bahan  penyalut  terhadap warna mikrokapsul ekstrak daun kelor
Perlakuan  M1W3  memiliki  nilai  L*  lebih tinggi  dibandingkan  dengan  perlakuan  M3W1. Semakin tiinggi nilai L* menandakan warna semakin cerah.  Perlakuan  sampel  dengan  penambahan  whey protein yang lebih banyak relatif lebih stabil terhadap oksidasi  yang  dapat  menurunkan  kualitas  warna enkapsulan suatu bahan (Toure et al., 2007).
Hue  merupakan  salah  satu  komponen  warna yang  menentukan  warna  suatu  bahan.  Perhitungan nilai hue dilakukan  berdasarkan  nilai  a*  dan  b* dengan  formulasi  yang  menyesuaikan  berdasarkan kuadran sudut hue. Hasil pengamatan nilai hue yang diperoleh pada perlakuan M1W3 dan M3W1 berada pada kisaran 178,52 ±  0,008 hingga 178,56 ± 0,002. Berdasarkan  kuadran  sudut  hue  kedua  perlakuan mikrokapsul mengarah ke hasil warna hijau.
Nilai  chroma  pada  perlakuan  M1W3  lebih rendah  dibandingkan  M3W1.  Semakin  tinggi  nilai chroma  maka  warna  yang  dihasilkan  akan  semakin tajam dan semakin rendah nilai chroma maka warna yang  dihasilkan  semakin  kusam  (Karangutkar  dan Ananthanarayan,  2020).  Perlakuan  dengan  rasio maltodekstrin  yang  lebih  banyak  menghasilkan ketajaman  wana  yang  lebih  baik.  Hal  ini  karena maltodekstrin memiliki viskositas yang lebih rendah yang  dapat  meningkatkan  kualitas  warna (Tonon  et al., 2010).

## KESIMPULAN DAN SARAN

## Kesimpulan
Rasio  bahan  penyalut  maltodekstrin  dan whey protein berpengaruh terhadap rendemen, kadar air, kelarutan, total fenolik, total flavonoid, aktivitas antioksidan,  efesiensi  enkapsulasi  dan  warna  yang dihasilkan. Karakteristik mikrokapsul terbaik berdasarkan kandungan senyawa fenolik dan aktivitas antioksidan diperoleh pada perlakuan rasio maltodekstrin dan whey protein sebesar 1:3.

## Saran
Perlu  dilakukan  penambahan  perlakuan  dan penelitian  lebih  lanjut  meliputi  kestabilan  terhadap
suhu,  pengujian  terhadap  parameter  fisik  dan  uji simpan  mikrokapsul ekstrak daun kelor.

## DAFTAR PUSTAKA
Ademiluyi AO, Aldaselu OH, Oboh G, Boligon AA. 2018. Drying alters the phenolic constituents, antioxidant  properties,  α-amylase,  and  α- glucosidase  inhibitory  properties  of  moringa (Moringa  Oleifera)  Leaf. Food  Science  and Nutrition. 6 (8): 1-11.
Alegantina  S,  Isnawati  A,  dan    Widowati  L.  2010.
Kualitas  ekstrak  etanol  70%  daun  kelor (Moringa  Oleifera  Lamk )  dalam  ramuan penambah ASI. Jurnal Kefarmasian Indonesia 3 (1): 1-8.
Anal  KA,  Shrestha  S,  dan  Sadiq  MB.  2019.
Biopolymeric-Based  emulsions  and  their effects  during  processing,  digestibility  and bioaccessibility  of  bioactive  compounds  in food  systems. Food  Hydrocolloids .  87  (2)  : 691-702
Armendáriz-Barragan B, Zafar N, Badri W, Galindo- Rodriguez SA, Kabbaj D, Fessi H, Elaissari A. 2016.  Plant  extracts:  from  encapsulation  to application. expert Opinion on Drug Delivery.
13 (8): 1165-1175.
Atisanto  VS,  Mulyani  S,  dan  Triani  IGAL.  2017.
Pengaruh Jenis pelarut dan suhu pengeringan terhadap  karakteristik  ekstrak  pada  buah kelubi  (Eliodoxa  Conferta). Jurnal  Rekayasa Dan Manajemen Agroindustri. 5 (3): 35–44. Bakar  MFA,  Karim  FA,  dan  Perisamy  E.  2015.
Comparison of Phytochemicals and Antioxidant Properties of Different Fruit Parts of  Selected  Artocarpus  Species  from  Sabah, Malaysia. Sains Malaysiana. 44 (3): 355–63. Ballesteros LF, Ramirez MJ, Orrego CE, Teixeira JA, Mussato SI. 2017. Encapsulation of antioxidant  phenolic  compounds  extracted from  spent  coffee  grounds  by  freeze-drying and  spray-drying  using  different  coating materials. Food Chemistry. 237 : 623-631 Bannikova  A,  Damir  Z,  Bituykova  A,  Evteev  A,
Blinohvatov A, Evdokimov I. 2021. Characterization and encapsulation of polyphenols  and  xylooligosaccharides  from oat  bran  in  whey  protein-  maltodextrin complex  coacervates. Journal  of  Hygienic Engineering and Design. 34: 109–18.
Baysan  U,  Bastıoğlu  AZ,  Coşkun  NÖ,  Takma  DK, Balçık  EÜ,  Sahin-Nadeem  H,  Koç  M.  2021. The  Effect  of  coating  material  combination and encapsulation method on propolis powder properties. Powder Technology. 384: 332–41.
Carrera C, Ruiz-Rodríguez A, Palma M, Barroso CG.
2012.  Ultrasound  assisted  extraction  of phenolic  compounds  from  grapes. Analytica Chimica Acta . 732 : 100-104
Cornelia  M,  Natania  K,  Cahyana  H,  Sutiyono  E. 2019.  Encapsulation  of  Soursop  (Annona Muricata  Linn.)  Leaf  Tea  Extract  Using Natural Mucilage. Reaktor . 19 (1): 26-33. Dadi  DW,  Emire  SA,  Hagos  AD,  Eun  JB.  2019. Effect  of  ultrasound-assisted  extraction  of moringa  stenopetala  leaves  on  bioactive compounds  and  their  antioxidant  activity. Food  Technology  and  Biotechnology. 57 (1330-9862): 1-10.
Ezhilarasi PN, Indrani D, Jena BS, Anandharamakrishnan C. 2014.
Microencapsulation of garcinia fruit extract by spray  drying  and  its  effect  on  bread  Quality. Journal  of  the  Science  of  Food  and Agriculture. 94 (6): 1116–23.
Fajar RI, Wrasiati LP, Suhendra L. 2018. The content of  the  flavonoid  compound  and  antioxidan activity  of  green  tea  extract  in  the  treatment temperature  and  time  brewing. Jurnal Rekayasa  Dan  Manajemen  Agroindustri. 6 (3): 196-202.
Fatmawati.  2020.  Pengaruh  ekstrak  daun  kelor (Moringa  Oleifera  L.)  Terhadap  Kualitas Yoghurt. Indobiosains. 2 (1): 1-8.
Felicia  N,    Widarta  WR,  Ariyusasrini  NL.  2017. Pengaruh ketuaan daun dan metode pengolahan terhadap aktivitas antioksidan dan karakteristik  sensoris  teh  herbal  bubuk  daun alpukat  (Persea  Americana  Mill.). Ilmu  Dan Teknologi Pangan. 5 (2): 1-11. Hasna  T,  Anandhito  RB,  Khasanah  LU,  Utami  R, Manuhara  GJ.  2018.  Pengaruh  Kombinasi maltodekstrin  dan  whey  sebagai  bahan penyalut  pada  karakteristik  mikroenkapsul oleoresin kayu manis (Cinnamomum Burmanii  )  effect  of  maltodextrin  and  whey combination  as  wall  material  on  the characteristics of cinnamon. Agritech: Jurnal Fakultas  Teknologi  Pertanian  UGM .  38  (3): 259–64.
Hsu CF, Zhang L, Peng H, Travas-Sejdic J, Kilmartin PA. 2008. Scavenging of DPPH Free Radicals by  polypyrrole  powders  of  varying  levels  of overoxidation  and/or  reduction. Synthetic Metals. 158 (21–24): 946-952.
Isailović  B,  Kalušević  A,  Žuržul  N,  Coelho  MT, Dordević  V,  Alves  VD,  Sousa  I,  Moldão- Martins  M,  Bugarski  B,  dan  Nedović  VA. 2012. Microencapsulation of Natural antioxidants from pterospartum tridentatum in different  alginate  and  inulin  systems.  In CEFood  2012  -  Proceedings  of  6th  Central European  Congress  on  Food .  Bandung, Indonesia. Januari 2012.
Jafari  SM.  2017. Nanoencapsulation  Technologies
for  the  Food  and  Nutraceutical  Industries . Nanoencapsulation Technologies for the Food and Nutraceutical Industries . Iran : Academic Press.
Jiménez-González O dan Guerrero-Beltrán JA. 2021.
Extraction, microencapsulation, color properties, and experimental design of natural pigments  obtained  by  spray  drying. Food Engineering Reviews . 13 (5): 769-811. Johansen CE. 1989. SPRAY DRYING
HANDBOOK. Drying Technology 7 (2): 419- 425
Karangutkar  AV  dan  Ananthanarayan  L.  2020.  Co- Crystallization  of  basella  rubra  extract  with sucrose:  characterization  of  co-crystals  and evaluating  the  storage  stability  of  betacyanin pigments. Journal  of  Food  Engineering 271 (4): 1-44.
Keogh  MK  dan  O’Kennedy  BT.  1999.  Milk  fat microencapsulation  using  whey  proteins. International Dairy Journal. 9 (9): 657-663.
Kha  TC,  Nguyen  MH,  Roach  PD.  2010.  Effects  of spray drying conditions on the physicochemical and antioxidant properties of the  gac  (Momordica  Cochinchinensis)  Fruit Aril Powder. Journal of Food Engineering. 98 (3): 385-392.
Khasanah  V  dan  Astuti  P.  2019.  Pengaruh Penambahan  ekstrak  dau  kelor  (moringa oleifera)  terhadap  kualitas  inderawi  dan kandungan protein mie basah substitusi tepung mocaf. Jurnal Kompetensi Teknik . 11 (2): 15– 21.
López  JG.  2020.  Flavonoids  in  health  and  disease. Current  Medicinal  Chemistry 26  (39):  6972- 6975
Mahdavi  SA,  Jafari  SM,  Assadpoor  E,  Dehnad  D. 2016.  Microencapsulation  optimization  of natural  anthocyanins  with  maltodextrin,  gum arabic  and  gelatin. International  Journal  of Biological Macromolecules . 85: 379–85.
Michel  J,  Tirado-Rives  J,  Jorgensen  WL.  2009. Prediction  of  the  Water  content  in  protein binding  sites. Journal  of  Physical  Chemistry B. 113 (40): 13337-13346.
Mittal A, Sharma M, David A, Vishwakarma P, Saini M,  Goel  M,  Saxena  KK.  2017.  An Experimental  Study  to  Evaluate  the  Anti- inflammatory effect of moringa oleifera leaves in  animal  models. International  Journal  of Basic  &  Clinical  Pharmacology. 6  (2):  452- 457.
Muthukumar M, Naveena BM, Vaithiyanathan S, Sen AR,  Sureshkumar  K.  2014.  Effect  of Incorporation  of  moringa  oleifera  leaves extract  on  quality  of  ground  pork  patties. Journal of Food Science and Technology. 51 (11): 3172-3180.
Nobossé  P,  Fombang  EN,  Mbofung  CM.  2018.
Effects  of  age  and  extraction  solvent  on
phytochemical content and antioxidant activity  of  fresh  moringa  oleifera  L.  Leaves. Food Science and Nutrition. 6 (8): 2188–98. Padayachee  B  dan  Baijnath  H.  2020.  An  Updated comprehensive  review  of  the  medicinal, phytochemical and pharmacological properties  of  moringa  oleifera. South  African Journal of Botany . 129: 1-13.
Pedro AC, Granato D, Rosso ND. 2016. Extraction of anthocyanins and polyphenols from black rice (Oryza Sativa L.) by Modeling and assessing their reversibility and stability. Food Chemistry. 191: 12-20.
Pietta PG. 2000. Flavonoids as Antioxidants. Journal of Natural Products . 63 (7): 1035-1042 Purnomo  W,  Khasanah  LU,  Anandito  BK.  2014. Pengaruh  ratio  kombinasi  maltodekstrin, karagenan  dan  whey  terhadap  karakteristik mikroenkapsulan  pewarna  alami  daun  jati (tectona  grandis  L.  F.). Jurnal  Aplikasi Teknologi Pangan. 3 (3): 99-107. Rani  NZ,  Husain  K,  Kumolosasi  E.  2018.  Moringa Genus:  a  review  of  phytochemistry  and pharmacology. Frontiers in Pharmacology . 9 (108): 1-26.
Rivai  ATO.  2020.  Identifikasi  Senyawa  yang terkandung pada ekstrak daun kelor (Moringa Oleifera). Indonesian Journal of Fundamental Sciences (IJfS). 6 (2): 63–70. Rubiyanti  R,  Syafa’ah  N,  Aji  N.  2019.  Pengaruh Pelarut  campur  etil  asetat  dan  n-heksan terhadap  rendemen  dan  golongan  senyawa kimia  pada  ekstrak  biji  alpukat  (Persea Americana  Mill.). Media  Informasi. 15  (1): 54-64.
Rumagit  HM,  Runtuwene  MRJ,  Sudewi  Sri.  2015. Uji Fitokimia dan uji aktivitas antioksidan dari ekstrak etanol spons lamellodysidea herbacea. Pharmacon 4 (3): 183–92.
Santoso BD, Ananingsih VK, Soedarini B, Stephanie
J.  2020.  Pengaruh  variasi  maltodekstrin  dan kecepatan homogenisasi terhadap karakteristik  fisikokimia  enkapsulat  butter pala  (Myristica  Fragrans  Houtt)  dengan metode  vacuum  drying. Jurnal  Teknologi Hasil Pertanian. 13 (2): 94-103.
Shah MA, Bosco SJ, Mir SA. 2015. Effect of moringa oleifera  leaf  extract  on  the  physicochemical properties  of  modified  atmosphere  packaged raw beef. Food Packaging and Shelf Life . 3 : 31-38.
Siregar TM dan Kristanti C. 2019. Mikroenkapsulasi Senyawa  fenolik  ekstrak  daun  kenikir (Cosmos  Caudatus  K.). Jurnal  Aplikasi Teknologi Pangan. 8 (1): 31–37. Sohaib M, Al-Barakah FN, Migdadi HM, Husain FM. 2021.  Comparative  Study  among  avicennia marina,  phragmites  australis,  and  moringa Oleifera  based  ethanolic-extracts  for  their antimicrobial,  antioxidant,  and  cytotoxic
activities. Saudi  Journal  of  Biological Sciences . 29 (1): 111-122.
Susanty,  Ridnugrah  NA,  Chaerrudin  A,  Yudistirani SA. 2019. Aktivitas antioksidan ekstrak daun kelor ( Moringa Oleife ra) Sebagai  zat tambahan  pembuatan  moisturizer. Seminar Nasional  Sains  Dan  Teknologi  2019  1 Fakultas  Teknik  Universitas  Muhammadiyah Jakarta. Jakarta, Indonesia . 16 Oktober 2019
:1–7.
Swandina AA, Cahyanti N, dan Sampurno A. 2017. Pengaruh  penambahan  ekstrak  daun  kelor ( Moringa Oleife ra) Terhadap Mutu Mikrobiologi Dan Organoleptik Susu
Pasteurisasi  Yang  Disimpan  Pada  Suhu Refrigerasi. e-Journal Boga . 4 (3): 151-159.
Tang  CH.  2019.  Nanostructured  soy  proteins: fabrication  and  applications  as  delivery systems  for  bioactives  (a  Review). Food Hydrocolloids . 91(9): 92-116.
Tonon  RV,  Brabet  C,  dan  Hubinger  MD.  2010.
Anthocyanin stability and antioxidant activity of  spray-dried  açai  (Euterpe  Oleracea  Mart.) Juice Produced with Different Carrier Agents.
Food Research International 43 (3): 907–914. Toure  A,  Xiaoming,  Z,  Jia  CS,  Zhijian  D.  2007.
Microencapsulation and oxidative stability of ginger  essential  oil  in  Maltodextrin/Whey Protein  Isolate  (MD/WPI). International Journal of Dairy Science . 2 (4): 387-392.
Vázquez  MFB,  Comini  LR,  Martini  RE,  Montoya SCN, Bottini S, Cabrera JL. 2014. Comparisons between conventional,
ultrasound-assisted  and  microwave-assisted methods for extraction of anthraquinones from heterophyllaea pustulata hook f. (Rubiaceae). Ultrasonics Sonochemistry. 21 (2): 478-484. Verdiana  M,  Widarta  IW,  and  Permana  ID.  2018.
Pengaruh  jenis  pelarut  pada  ekstraksi menggunakan gelombang ultrasonik terhadap aktivitas antioksidan ekstrak kulit buah lemon (Citrus  Limon  (Linn.)  Burm  F.). Jurnal  Ilmu Dan  Teknologi  Pangan  (ITEPA). 7  (4):  213- 222.
Vongsak B, Sithisarn P, Mangmool S, Thongpraditchote S, Wongkrajang Y, Gritsanapan  W.  2013.  Maximizing  Total phenolics,  total  flavonoids  contents  and antioxidant  activity  of  moringa  oleifera  leaf extract  by  the appropriate  extraction method. Industrial Crops and Products. 44: 566–71. Wahyuningtyas TA, Hamidah S, Lastariwati B. 2019.
Pukis  ekstrak  daun  kelor  (Moringa  Oleifera) sebagai  cemilan  bernutrisi  tinggi  untuk  ibu menyusui. HEJ (Home Economics Journal) . 3 (2): 38–61.
Widyasanti  A,  Nurlaily  N,  dan  Wulandari  E.  2018. Karakteristik  fisikokimia  antosianin  ekstrak kulit  buah naga merah  menggunakan metode uae. Jurnal  Ilmiah  Rekayasa  Pertanian  Dan
Biosistem. 6 (1): 27–38.
Ling  Y,  Yeong,  Fun  PS,  Yeop  A,  Yusoff  MM,
Gimbun  J.  2019.  Assessment  of  maceration, ultrasonic  and  microwave  assisted  extraction for  total  phenolic  content,  total  flavonoid content and kaempferol yield from cassia alata via microstructures analysis. Materials Today: Proceedings 19: 1273–79.
Yuliantari NWA, Widarta IWR, dan  Permana IDG. 2017.  Pengaruh  suhu  dan  waktu  ekstraksi terhadap  kandungan  flavonoid  dan  aktivitas antioksidan daun sirsak (Annona Muricata L.) Menggunakan  Ultrasonik). Media  Ilmiah Teknologi Pangan. 4 (1): 35–42.
Yuliawaty, Tresna S, dan Susanto WH. 2015. Pengauh Lama pengeringan dan konsentrasi maltodektrin terhadap karakteristik fisik kimia dan organoleptik  minuman  instan  daun  mengkudu (Morinda  Citrifolia  L). Jurnal  Pangan  dan Agroindustri 3 (1).
Yunianti D. 2020. Aktivitas antioksidan daun pegagan
(Centella  Asiatica  L.Urban)  dan  bunga  krisan (Crhysanthemum  Sp)  Pada  tiga  variasi  suhu pengeringan. Pasundan  Food  Technology Journal . 6 (3): 142-147.
Zhang  Q,  Zhou  Y,  Yue  W,  Qin  W,  Dong  H,  and Vasanthan T.  2021.  Nanostructures  of  protein- polysaccharide  complexes  or  conjugates  for encapsulation  of  bioactive  compounds. Trends in Food Science and Technology. 109 (1): 169– 96.
Zorić Z, Pelaić Z, Pedisić S, Garofulić IE, Kovačević DB, Dragović–Uzelac V. 2017. Effect of storage conditions  on  phenolic  content  and  antioxidant capacity  of  spray  dried  sour  cherry  powder. LWT. 79: 251-259
Zuidam  NJ  dan  Nedović  VA.  2010.  Encapsulation
Technologies  for  active  food  ingredients  and food  processing. Encapsulation  Technologies for  Active  Food  Ingredients  and  Food Processing .  Springer Science. P3-29.