Aktivitas Antagonistik Endofit Fusarium solani EnI dari Bunga Bawang Dayak terhadap Aspergillus flavus ,
Kontaminan dari Kacang Kedelai
Antagonistic Activities of Endophytic Fusarium solani EnI from Eleutherine palmifolia Flower against Aspergillus flavus ,
Contaminants from Soybean
Noorkomala Sari 1 *; Akhmad Rizali 1 ; Noor Laili Aziza 2
1 Jurusan Agroekoteknologi, Fakultas Pertanian, Universitas Lambung Mangkurat, Indonesia
2 Kebun Raya Banua, Balitbangda Provinsi Kalimantan Selatan, Indonesia
* noorkomala.sari@ulm.ac.id

## Abstrak
Cendawan  endofit  merupakan  salah  satu  agen  pengendali  biologi  yang  akhir  akhir  ini dilaporkan  kemampuanya  dalam  melindungi  tanaman  dari  stres  lingkungan  baik serangan hama dan penyakit. Cendawan endofit Fusarium solani EnI telah diisolasi dari bunga  tanaman  obat  Bawang  Dayak  di  wilayah  lingkungan  lahan  basah  Kalimantan Selatan dapat digunakan sebagai pengendali pertumbuhan patogen tanaman. Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui kemampuan antagonisme cendawan endofit dari bunga bawang  dayak,  yaitu Fusarium  solani EnI  serta  terhadap  cendawan Aspergillus  flavus yang  mengkontaminasi  kacang  kedelai.  Parameter  pengamatan  penelitian  ini,  daya hambat  cendawan  endofit  ke F.  solani En1  menggunakan  metode dual  culture .  Hasil penelitian menunjukkan  adanya  ragam  persen  daya  hambat cendawan endofit F.solani EnI  terhadap  cendawan  kontaminan  kacang  kedelai A.flavus sec ara  in  vitro pada  tiga media tumbuh, yaitu pada media PDA sebesar 36,67%, media kedelai sebesar 31,19%, dan media jagung sebesar 25%.
Kata kunci : Metabolit Sekunder, Agensia Hayati, Pertanian Terpadu, Lahan Basah

## Abstract
Endophytic  fungi  are  one  of  the  biological  control  agents  whose  ability  has  recently been reported to protect plants from environmental stress, both pests, and diseases. The endophytic fungus Fusarium solani EnI has been isolated from the flowers of the Dayak onion  medicinal  plant  in  the  wetland  environment  of  South  Kalimantan,  which  can  be used  as  agent  biological  control  to  plant  pathogen.  This  study  to  determine  the antagonism  ability  of  the  endophytic  fungus  from  Dayak  onion  flower,  F.  solani  EnI against  Aspergillus  flavus  which  contaminates  soybeans.  Parameters  observed  in  this study, the inhibition of endophytic fungi to F. solani En1 using the dual culture method. The results showed a variation in the percentage of inhibition of the endophytic fungus F. solani EnI against the contaminant fungus A. flavus soybean in vitro on three culture media, which are PDA is 36.67%, soybean media is 31.19%, and corn media is 25%.
Key  words :  Secondary  Metabolites,  Biological  Control  Agent,  Antagonism,  Dual Culture, Plant Diseases

## PENDAHULUAN
Bawang dayak ( Eleutherine palmifolia ) diketahui mengandung senyawa fitokimia seperti triterpenoid, saponin, fenolik, tanin, flavonoid, alkaloid dan steroid (Febrianda et al .,  2013).  Karena  kandungan  bahan  metobolit  sekundernya  Bawang  Dayak  banyak dimanfaatkan  oleh  masyarakat,  khususnya  Kalimantan  Selatan  sebagai  tanaman  obat- obatan.    Selain  itu,  Bawang  Dayak  yang  dibudidayakan  dengan  sistem  polikutur bersama  bawang  merah  dilaporkan  mampu  menurunkan  50%  kejadian  penyakit  moler pada bawang merah dibandingkan sistem monokulter bawang merah saja yang biasanya diterapkan  oleh  masyarakat  Kalimantan  Selatan  (Aziza,  2016).  Hal  inilah  yang menjadikan Bawang Dayak banyak dibudidayakan masyarakat di lahan basah.
Bunga bawang dayak dilaporkan mengandung 33,8% flavonoid dan fenol (Shi, P., W.  Du,  Y.  Wang,  X.  Teng,  X.  Chen,  L.  Ye.,  2019).  Potensi  kandungan  senyawa fitokimia  tersebut  harus  dimanfaatkan  dan  salah  satunya  dengan  menggunakan cendawan endofit yang ada pada bunga bawang dayak tersebut.
Studi  melaporkan  kemampuan  cendawan  endofit  sebagai  sumber  produksi senyawa metabolit sekunder/ elisitor yang berperan dalam Induced Systemic Resistance (Sari,  2020).  Sebagai  contoh,  cendawan  endofit Trichoderma  atrovoride berpotensi dalam  mengendalikan  cendawan  penghasil  aflatoksin A.  flavus dengan  daya  hambat 62,59% (Najib et al ., 2014).
Cendawan  endofit  adalah  cendawan  dengan  siklus  hidupnya  berada  di  dalam jaringan tanaman yang tidak menunjukkan gejala penyakit (Higginbotham et al ., 2013; Faeth  &  Fagan,  2002).  Endofit  diteliti  sebagai  mikroorganisme  yang  mampu menghasilkan senyawa biokimia yang sama seperti inangnya karena endofit diwariskan beberapa  info  genetik  dari  inangnya  melalui  suatu  proses  evolusi  di  dalam  jaringan inangnya (Tan & Zou, 2001).
Dengan kultur endofit lebih mudah dikembangbiakkan sebagai agensia hayati dan juga  sifatnya  yang  ramah  lingkungan.  Sebagai  penelitian  lebih  lanjut,  dapat  pula dilakukan pengekstrasian kultur endofit dalam mengisolasi senyawa metabolit sekunder yang  dihasilkan  oleh  cendawan  endofit  yang  dapat  dimanfaatkan  sebagai  bahan kimia/elisitor pengendalian pertumbuhan cendawan merugikan pada bidang pertanian.
Salah satu endofit yang berperan sebagai agen  antagonis adalah Fusarium solani (Gao et al ., 2010).  Telah dilakukan isolasi cendawan endofit dari bunga Bawang Dayak yaitu F. solani EnI yang memiliki aktivitas antagonistik terhadap Fusarium oxysporum penyebab penyakit molar pada bawang merah secara in vitro sebesar 65,37% (Rizali et al .,  2021a)  dan  ekstrak  dari  kultur  endofit F.  solani En1  juga  memiliki  nilai  hambat pada  patogen F.  oxysporum sebesar  71,09%  (Rizali et  al .,  2021b).  Cendawan  endofit bunga  Bawang  Dayak  dan  bahan  ekstrak  yang  dihasilkannya  memiliki  nilai  daya hambat  terhadap F.  oxysporum yang  cukup  tinggi  hal  ini  menunjukkan  kemampuan yang besar pula dalam mengendalikan pertumbuhan patogen tersebut.
Zahar (2018) melaporkan kemampuan bakteri endofit Acinetobacter sp ., Bacillus sp.,  dan Enterobacter sp.  yang  diisolasi  dari  kacang  tanah  memiliki  daya  hambat terhadap A.  flavus sebesar  65,25  –  71.64%.  Dengan  kemampuan antagonistik  mikroba
endofit diatas menunjukkan bahwa mikroba endofit yang diisolasi dari jaringan tanaman memiliki kemampuan tidak hanya dalam menghambat pertumbuhan cendawan patogen tetapi juga dalam mengendalikan cendawan kontaminan di bidang pertanian.
Penggunaan  cendawan  endofit  dari  bunga  bawang  dayak  dalam  mengendalikan cendawan kontaminan belum pernah dilaporkan sehingga penelitian ini bertujuan untuk mengetahui  aktivitas antagonistik  endofit F.solani EnI terhadap pertumbuhan A.flavus , cendawan kontaminan dari kacang kedelai.

## METODE PENELITIAN
Isolasi Aspergillus flavus dari kacang kedelai yang terkontaminasi
Diambil  satu  jarum  ent  miselia  dari  kacang  kedelai  yang  terinfeksi A.  flavus kemudian  dikulturkan  pada  media  kultur  PDA  ( Potato  Dextrose  Agar )  selama  7  Hari Setelah Inokulasi (HSI)
Uji Antagonisme Cendawan Endofit Fusarium solani En1 terhadap Aspergillus flavus secara in vitro
Uji  antagonisme  dilakukan  pada  tiga  jenis  media  kultur  sebagai  perlakuan  yaitu media PDA, media jagung dan media kedelai.  Media jagung dan media kedelai dibuat dengan  menggunakan  ekstrak  masing-masing  jagung  dan  kedelai  yang  dilarutkan dengan dextrose dan bubuk agar plain. Setiap perlakuan dilakukan 8 ulangan sehingga terdapat 24 satuan percobaan. Tiap cawan percobaan ditandai dengan tiga titik masing- masing  berjarak  3  cm.  Pada  cawan dual  culture ,  titik  kanan  diinokulasikan F.  solani En1  dan  di  titik  kiri  diinokulasikan  isolat A.  flavus ,  kemudian  dilakukan  inkubasi selama 7 HSI. Sedangkan pada cawan kontrol hanya diinokulasikan A. flavus pada titik kiri. Persen penghambatan cendawan endofit terhadap A. flavus dihitung dengan rumus (1). Data persen hambat dianalisis dengan uji Levene 5% dan dilanjutkan dengan Anova 5% dan uji lanjutan DMRT 5 %.
Gambar 1. Ilustrasi uji antagonisme secara dual culture (Skidmore & Dickison, 1973)
………….(1)
Keterangan:
R1= jarak tumbuh A. flavus di cawan single culture (a)
R2= jarak tumbuh A. flavus di cawan dual culture (b)

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Isolasi Aspergillus flavus dari kacang kedelai yang terkontaminasi
Diambil  satu  jarum  ent  miselia  dari  kacang  kedelai  yang  terinfeksi A.  flavus kemudian dikulturkan pada media kultur PDA selama 7 HSI. Pengamatan morfologi secara makroskopik dan mikroskopik ditunjukkan pada Gambar 2.

## (a) (b)
Gambar 2. A. flavus dari kacang kedelai (a) koloni pada kultur PDA 7 HSI dan (b) konidia dan koninidafor, M=400.
A.  flavus adalah  merupakan  cendawan  yang  bersifat  sporofit. A.  flavus memiliki  septa, hyalin,  konidiafor  dilengkapi  sel  apikal  yang  mengembung  dan  dilengkapi  banyak  philiades, massa spora ada yang hialin ataupun berwarna hijau, konidia berbentuk silindrikal dan hijau tua. Koloni radiate dengan warna hijau dan pinggiran kekuningan dan tidak rata dengan permukaan koloni  bertekstur  velvety  (Watanabe,  2002). Miselia  bercabang,  konidiafor  berukuran  400-800 µm dengan bentuk kepala kolom, radial atau bola, hifa berseptum, dan pertumbuhan koloni 6-7 cm  dalam  7-10  hari. A.  flavus tumbuh  pada  suhu  17-  42° C dengan  pertumbuhan  optimumnya pada 15-30°C, Kadar air 15-30% dan kelembaban 87-98%. (Agnis & Wantini, 2017).
Menurut  Retnowati et  al .,  (2012) A.  flavus tumbuh  pada  media  beras,  jagung,  atau kombinasinya. Sebelum panen, benih kacang rentan terhadap infeksi A. flavus yang dipengaruhi oleh  faktor  biotik:  umur  dan  genotip,  dan  abiotik:  lingkungan.  Pertumbuhan A.flavus optimal terjadi  ketika  kadar  air  benih    15-30%,  kelembaban  relatif  87-98%.  Dimana,  kadar  air  benih dipengaruhi oleh kelembaban relatif lingkungan sekitar benih (Rahmianna, 2013).
Hal ini disebabkan benih memproduksi senyawa antimikroba dan antijamur, phytoalexins (yang  memiliki  Kadar  air  benih  lebih  tinggi).  Akibat  cekaman  kekeringan,  jumlah  benih  yang terinfeksi A. flavus meningkat sekitar 20-25 hari sebelum panen. Infeksi A. flavus terjadi selama periode pra panen ketika tanaman mengalami kekeringan dan suhu  di lapisan polong 25-38 °C. Infeksi A. flavus pada biji dipengaruhi oleh tingkat kelembaban tanah yang mana memengaruhi kadar air polong. Berkurangnya kandungan air pada polong menurunkan aktivitas metabolisme benih sehingga membuat benih lebih rentan terhadap infeksi (Rahmianna, 2013).
Uji Antagonisme Cendawan Endofit Fusarium solani En1 terhadap Aspergillus flavus secara in vitro
Hasil pengukuran daya hambat (%) disajikan pada Gambar 3. Pada grafik digunakan tiga media  kultur  yang  kompatibel  dengan A.  flavus yaitu  media  PDA,  media  jagung  dan  media kedelai. Pengamatan daya hambat dimonitoring selama 3 kali yaitu pada 3, 5, dan 7 HSI (Hari Setelah Inokulasi).
* DMRT 5% (n=8)
Gambar 3. Daya hambat endofit F.solani En1 terhadap A.flavus
Berdasarkan  hasil  pengamatan  pada  7  HSI,  endofit F.solani En1  menunjukkan kemampuan  menghambat  pertumbuhan A.flavus baik  pada  media  PDA,  jagung  dan  kedelai. Hasil  pengukuran  daya  hambat  masing  masing  perlakuan  media  pun  beragam,  dimana  nilai persen hambat tertinggi ditunjukkan pada media PDA yaitu 36,67% di 7 HSI (Gambar 4).
Gambar 4. Dual culture A.flavus dengan endofit F.solani En1 di media PDA pada 7 HSI
Pada  cawan  perlakuan  ( dual  culture )  pertumbuhan  cendawan A.flavus lebih  lambat dibandingkan  dengan  pertumbuhannya  di  kontrol  ( single  culture )  dan  terlihat  bahwa  terjadi mekanisme  antibiosis.  Mekanisme  antibiosis  ditunjukkan  dengan  terbentuknya  zona penghambatan ( clear zone ) pada pertemuan antara cendawan endofit dengan cendawan patogen. Senyawa  yang  dihasilkan  cendawan  endofit  genus Fusarium sp.  menunjukkan  berbagai aktivitas, seperti antibakteri, antijamur, dan aktivitas sitotoksik. Cendawan endofit Fusarium sp. menghasilkan  keanekaragaman  metabolit  sekunder  bioaktif  antara  lain  naftokuinon,  misalnya javanicin, fusarubin, solanina, martisin, dan nectraiafurone (Luo & XingZhao, 2021).
Pertumbuhan A.flavus pada  media  jagung  merupakan  daya  hambat  terendah  dari  tiga perlakuan  media  kultur  yaitu  25%.  Pada  cawan dual  culture media  jagung  terlihat  endofit F.solani En1 menunjukkan mekanisme hambat parasitisme (Gambar 5).
Gambar 5. Interaksi A.flavus dengan endofit F.solani En1di media jagung pada 7 HSI
[V A LU E] b [V A LU E] a [V A LU E] b [V A LU E] a [V A LU E] b [V A LU E] a [V A LU E] ab [V A LU E] b [V A LU E] c 3   H S I 5   H S I 7   H S I D AYA HAM B AT (% )
Kedelai Jagung PDA
Mekanisme  parasitisme  terjadi  apabila  jari-jari  miselia  cendawan  patogen  tumbuh tertutupi oleh miselia cendawan endofit. Terhambatnya pertumbuhan miselia cendawan patogen terjadi  karena  pertumbuhan  cendawan  endofit  mendominasi  pertumbuhan  cendawan  patogen sehingga  pertumbuhan  cendawan  patogen  akan  terdesak  akibat  kehabisan  ruang  tumbuh (Nahdah et  al .,  2020).  Interaksi  kedua  miselia  ini  dalam  cawan dual  culture juga  digolongkan oleh  Skidmore  &  Dickinson  (1976)  sebagai  pola  interaksi overgrowth  by  antagonist yaitu pertumbuhan yang saling tumpang tindih karena aktivitas antagonisme oleh mikroba antagonis.
Cawan dual  culture pada  media  kedelai  memiliki  kekuatan  daya  hambat  yang  tidak berbeda secara signifikan dengan media PDA yaitu 31,19%.
Gambar 6. Dual culture A.flavus dengan endofit F.solani En1 di media kedelai pada 7 HSI
Pada  media  kultur  menggunakan  kedelai  pun  terjadi  mekanisme  antibiosis  terhadap A.flavus . Zona penghambatan dengan pola antagonis ini terbentuk karena elisitor atau senyawa metabolit  sekunder  yang  bersifat  antifungal  yang  disekresikan  oleh  cendawan  endofit menghambat pertumbuhan A.flavus .
Mekanisme  antibiosis  menunjukkan  interaksi  kedua  miselia  pada  cawan dual  culture digolongkan  oleh  Skidmore  &  Dickinson,  1976  dengan  pola mutual  slight  inhibition dikenal dengan pola interaksi dimana kedua koloni fungi satu sama lain hampir saling bertemu dengan menyisakan  sedikit  ruang  (zona  bening)  1-2  mm.  Zona  bening  terjadi  berkaitan  erat  dengan kemampuan  endofit  dalam  menghasilkan  enzim-enzim  ekstraseluler  seperti  kitinase,  selulase, protease  dan  pektinase.  Enzim  kitinase  merupakan  enzim  yang  mampu  mendegradasi  dinding sel  fungi  patogen  yang  disusun  oleh  senyawa  kitin.  Selain  enzim,  cendawan  endofit  antagonis juga mensekresikan senyawa metabolit sekunder lainnya (Backman & Sikora, 2008).
Begitu juga Gao et al ., (2010) menjelaskan bahwa zona penghambatan ( clear zone ) yang terjadi mengindikasi bahwa cendawan endofit tersebut memproduksi bahan kimia yang bekerja dalam  menghambat  kolonisasi  mikroba  lainnya.  Bahan  kimia  tersebut  berupa  mikotoksin, antibiotik, ataupun enzim pendegradasi yang bersifat sebagai antimikroba.

## KESIMPULAN
Terdapat aktivitas antagonistik cendawan endofit F.solani EnI yang diisolasi dari bunga  bawang  dayak  terhadap  cendawan  kontaminan A.  flavus dari  kacang  kedelai secara in vitro . Uji dual culture mengemukakan adanya keberagaman persen hambat di tiga  media  tumbuh  yang  diujikan  yaitu  media  PDA  sebesar  36,67%,  media  kedelai sebesar 31,19%, dan media jagung sebesar 25%.

## UCAPAN TERIMAKASIH
Penelitian ini merupakan bagian “Program Dosen Wajib Meneliti” Universitas Lambung Mangkurat  Tahun  2022  yang  dikelola  oleh  LPPM  (Lembaga  Penelitian  dan  Pengabdian Masyarakat) Universitas Lambung Mangkurat.

## DAFTAR PUSTAKA
Agnis,  F.  R.,  &  Wantini,  S.  (2017).  Gambaran  jamur Aspergillus  flavus pada  bumbu  pecel instan  dalam  kemasan  tanpa  merek  yang  dijual  di  Pasar  Gedong  Tataan  Kabupaten Pesawaran. Jurnal Analis Kesehatan , 4(1), 456–460.
Astuty,  S.  (2006).  Hasil  dan  kandungan  bioaktif  komponen  tanaman  bawang  sabrang ( Eleutherine  americana Merr.)  pada  pengolahan  tanah  dan  pemberian  pupuk  Kalium  di tanah  ultisol.  Tesis.  Program  Studi  Pasca  Sarjana  Agronomi  Universitas  Lambung Mangkurat. Banjarbaru.
Aziza,  N.L.  (2016).  Analisis  aplikasi Fusarium spp.,  pupuk  kalium,  dan  pola  tanam  terhadap kejadian  penyakit  moler  serta  pertumbuhan  dan  hasil  tanaman  bawang  merah.  Program Studi  Magister  Agronomi  Program  Pascasarjana  Universitas  Lambung  Mangkurat. Banjarbaru.
Backman, P. A., & Sikora,  R.  A. (2008). Endophytes:  an  emerging tool for biological  control. Biological control , 46(1), 1-3. https://doi.org/10.1016/j.biocontrol.2008.03.009
Bhardwaj, A., & P. Agrawal. (2014). A review fungal endophytes: as a store house of bioactive compound. World Journal of Pharmacy and Pharmaceutical Sciences . 3(9): 229-237.
Darmayasa, I, & Oka, I. G.L. (2016.) A Study on Inhibitory Effect of Trichoderma sp. TKD on Aspergillus  Flavus FNCC6106  and  Its  Molecular  Identification.  International.  J.  Pure App 4 (2): 103 – 110
Faeth,  S.  H.,  &  Fagan,  W.  F.  (2002).  Fungal  endophytes:  common  host  plant  symbionts  but uncommon mutualists. Integrative and Comparative Biology , 42(2), 360-368.
Febrinda,  A.E.,  M.  Astawan,  T.  Wresdiyati,  dan  B.D.  Yuliana.  (2013).  Kapasitas  antioksidan dan inhibitor alfa glukosidae ekstrak umbi bawang dayak. Jurnal Teknologi dan Industri Pangan . 2(24): 161-167.
Gao,  F.K.,  C.C.  Dai.,  dan  X.Z.  Liu.  (2010).  Mechanisms  of  fungal  endophytes  in  plant protection  against  pathogens. African  Journal  of  Microbiology  Research .  4(13):  1346- 1351.
Higginbotham,  S.  J.,  Arnold,  A.  E.,  Ibañez,  A.,  Spadafora,  C.,  Coley,  P.  D.,  &  Kursar,  T.  A. (2013).  Bioactivity  of  fungal  endophytes  as  a  function  of  endophyte  taxonomy  and  the taxonomy and distribution of their host plants. PloS one , 8(9), e73192.
Kyekyeku, J. O., Kusari, S., Adosraku, R. K., Bullach, A., Golz, C., Strohmann, C., & Spiteller, M.  (2017).  Antibacterial  secondary  metabolites  from  an  endophytic  fungus,  Fusarium solani JK10. Fitoterapia , 119, 108-114.
Lutfiyanti, R., W.F. Ma’ruf, dan E.N. Dewi. (2012). Aktivitas anticendawan senyawa bioaktif ekstrak Gelidium  latifolium terhadap Candida  albicans . Jurnal  Pengolahan  dan Bioteknologi Hasil Perikanan 1 (1): 26 – 33.
Luo, Q., & XingZhao, Y. (2021) Two new compounds isolated from the entomogenous fungus Fusarium sp. LGWB-7. Phytochemistry Letters . 41
Najib, A., Hastuti, U Sri, & Yusnawan, E. (2014). Identifikasi Kapang  Trichoderma  Spp. Dari Rhizosfer  Tanah  Pertanian  Kedelai  dan  Daya  Antagonismenya  Terhadap  Aspergillus flavus secara in vitro. 438-439
Nahdah, F., Sari, N., Rizali, A. & Wahdah, R. (2020). Antagonisme Fungi Endofit Daun Jarak Pagar  (Jatropha  curcas)  terhadap  Fusarium  oxysporum  C2  Penyebab  Busuk  Umbi  pada
Bawang Merah in Vitro. Agrotechnology Research Journal . 4. 47.
https://doi.org/10.20961/agrotechresj.v4i1.41351
Purwita,  A.A.,  N.K.  Indah,  dan  G.  Trimulyono.  (2013).  Penggunaan  ekstrak  daun  srikaya ( Annona  squamosa )  sebagai  pengendali  cendawan Fusarium  oxysporum secara in  vitro . Ejournal Lentera Bio . ISSN: 2252-3979. 2(2): 179-183.
Prastyaningsih,  Y.,  F.  Nadifah,  &  I.  Susilowati.  (2015).  Distribusi  Jamur  Aspergillus  Flavus Pada Petis Udang Yogyakarta. Jurnal analisis kesehatan . ISSN 2407-9189
Purnamasari,  L.,  Agus,  A,  &  Noviandi,  T,  Cuk.  (2016).  Kajian  Produksi  Aflatoksin  B1  Kasar Dari  Isolat  Kapang  Aspergillus  flavus.  Lokal  Pada  Media  Jagung  Dan  Jagung-Kacang Tanah. Buletin Peternakan . 40 (2): 133-137
Purwantisari, S., & Rini, B.H. (2009). Uji Antagonisme Jamur Patogen Phytophthora infestans Penyebab  Penyakit  Busuk  Daun  dan  Umbi  Tanaman  Kentang  Dengan  Menggunakan Trichoderma spp. Isolat Lokal. Bioma , 11(1): 24-32.
Rahayu,  T.,  dan  T.  Rahayu.  (2009).  Uji  anticendawan Kombucha  coffee terhadap Candida albicans dan Tricophyt  mentagrophytes . Jurnal  Penelitian  Sains  dan  Teknologi .  1(10): 10-17.
Rahmianna,  A.  A.  (2013).  Kontaminasi  Aflatoksin  dan  cara  pengendaliannya  melalui penanganan pra dan pascapanen. Balai Penelitian Tanaman Aneka Kacang Dan Umbi, 13, 19. https://balitkabi.litbang.pertanian.go.id
Retnowati,  Y.,  Uno,  W.  D.,  Kumaji,  S.,  &  Humokor,  Y.  (2012).  Pertumbuhan  Kapang Monascus  purpureus,  Aspergillus  flavus  dan  Penicillium  sp  pada  Media  Beras,  Jagung dan Kombinasi Beras Jagung. Sainstek, Vol 5, No 3, 2010.
http://ejurnal.ung.ac.id/index.php/ST/article/view/362
Rizali, A., Aziza, N. L., Sari, N., & Irsalina, S. (2021a). Potensi Cendawan Endofit dari Bunga Bawang  Dayak  dalam  Menekan  Patogen  Fusarium  spp.  In  Prosiding  Seminar  Nasional Lingkungan Lahan Basah (Vol. 6, No. 1).
Rizali,  A.,  Laili  Aziza,  N.,  &  Sari,  N.  (2021b).  Antagonistic  Activities  of  Endophytic  Fungi Isolated  from  Eleutherine  palmifolia  Flower. Pakistan  journal  of  biological  sciences : PJBS, 24(10), 1015–1021. https://doi.org/10.3923/pjbs.2021.1015.1021
Rodriguez, R. J., White Jr, J. F., Arnold, A. E., & Redman, A. R. A. (2009). Fungal endophytes: diversity and functional roles. New phytologist , 182(2), 314-330.
Sari,  N.  (2020).  Review  of  Endophytic  Fungi  as  Biocontrol  Agents  Against  Plant  Pathogen. Gontor AGROTECH Science Journal , 6(1), 55-73.
Schubert  M.,  Siegfried  F.,  Francis  W.M.R.  dan  Schwarze.  (2008).  In  Vitro  Screening  of  an Antagonistic Trichoderma Strains Against Wood Decay Fungi. Arboricultural J . 31: 227– 248.
Shi, P., W. Du, Y. Wang, X. Teng, X. Chen, L. Ye. (2019). Total phenolic, flavonoid content, and  antioxidant  activity  of  bulbs,  leaves,  and  flowers  made  from Eleutherine  bulbosa (Mill.) Urb. Food Science dan Nutrition Journal . 7:148-154.
Skidmore, A. M., & Dickinson, C. H. (1973). Effect of phylloplane fungi on the senescence of excised barley leaves. Transactions of the British Mycological Society , 60(1), 107-116.
Skidmore,  A.  M.,  &  Dickinson,  C.  H.  (1976).  Colony  interactions  and  hyphal  interference between  Septoria  nodorum  and  phylloplane  fungi. Transactions  of  the  British Mycological Society , 66(1), 57-64.
Sugianitri,  N.  K.  (2011).  Ekstrak  Biji  Buah  Pinang  ( Areca  catechu L.)  dapat  Menghambat Pertumbuhan  Koloni  Candida  albicans  secara  In  Vitro  pada  Resin  Akrilik  Heat  Cured. Tesis. Program Pascasarjana Program Studi Ilmu Biomedik Universitas Udayana. Bali.
Sundari. (2006). Produktivitas dan kandungan bioaktif bawang sabrang ( Eleutherine americana Merr.)  pada  beberapa  dosis  pupuk  Kalium  dan  persen  naungan  di  tanah  ultisol.  Tesis. Program Studi Pasca Sarjana Agronomi Universitas Lambung Mangkurat. Banjarbaru.
Suparyati,  T.  (2015).  Perbandingan  Kontaminasi  Jamur  Aspergillus  sp  pada  Kacang  Kedelai Berbiji  Kuning  Kualitas  Baik  Dan  Jelek  Yang  Dijual  Di  Pasar  Wiradesa  Kab. Pekalongan.
Strobel,  G.,  &  Daisy,  B.  (2003).  Bioprospecting  for  microbial  endophytes  and  their  natural products. Microbiology and molecular biology reviews , 67(4), 491-502.
Tan, R. X., & Zou, W. X. (2001). Endophytes: a rich source of functional metabolites. Natural product reports, 18(4), 448-459.
Tayung, K., Barik, B. P., Jha, D. K., & Deka, D. C. (2011). Identification and characterization of  antimicrobial  metabolite  from  an  endophytic  fungus,  Fusarium  solani  isolated  from bark of Himalayan yew. Mycosphere , 2(3), 203-213.
Waruwu,  A.A.S.,  B.  P.  W.  Soekarno,  A.  Munif.  (2016).  Metabolit  cendawan  endofit  tanaman padi  sebagai  alternative  pengendalian  cendawan  patogen  terbawa  benih  padi. Jurnal Fitopatologi Indonesia . 12(2):53-61.
Watanabe, T. (2002). Pictorial Atlas Of Soil and Seed Fungi: Morphologies Of Cultured Fungi And Key To Species . CRC Press.
Zahar, N. (2015). Metabolit Bakteri Endofit Asal Tanaman Kacang Tanah sebagai  Penghambat Pertumbuhan Aspergillus flavus, 14(1), 14-15