BERKALA SAINSTEK 2024 12(2): 44-56 doi: 10.19184/bst.v12i.2.41494 https://jurnal.unej.ac.id/index.php/BST/article/view/41494

## RESEARCH   ARTICLE

## Polyphenol Extraction from Musa corniculata Peel Using Microwave Assisted Extraction (MAE) Method with Ethanol Solvent
(Ekstraksi Polifenol dari Kulit Pisang Tanduk ( Musa Corniculata ) Menggunakan Metode Microwave Assisted Extraction (MAE) dengan Pelarut Etanol)
Istiqomah Rahmawati 1,2*) , Ach.Sa’roni 1 , Maharani Tri Wardhani 1 , Boy Arief Fachri 1,2 , Bekti Palupi 1,2 , Meta Fitri Rizkiana 1,2 , Helda Wika Amini 1,2 , Muhammad Reza 3 1 Jurusan Teknik Kimia, Fakultas Teknik, Universitas Jember, Jl. Kalimantan 37, Jember, Indonesia
2 Research Center for Biobased Chemicals Product, Jl. Kalimantan 37, Jember, Indonesia 3 Jurusan Kimia, FMIPA, Universitas Jember, Jl. Kalimantan 37, Jember, Indonesia

## ABSTRACT
Banana peel ( Musa corniculata ) is one of the superior plants in Indonesia which is rich in polyphenolic compounds as a source of antioxidants. The potential of polyphenolic compounds as antioxidants can be used as an alternative to reduce banana peel waste. This study aims to determine the total content of polyphenols and antioxidant activity of horn banana peel extract. Extraction used the Microwave Assisted Extraction (MAE) method with ethanol solvent and the variables were extraction time (4, 7, and 10 minutes), solvent concentration (50, 73 and 96 %), ratio of simplicia mass to solvent volume (1:12, 1 :8, 1:6 g/mL) with a microwave power of 150 Watt. Determination of polyphenol content using the Folin-Ciocalteau method and the ability of polyphenols as antioxidants were analyzed by DPPH test. This study used the Design Expert 13 Response Surface Methodology software, the Box Behnken type, to determine the extraction parameters for the total polyphenol content. The highest total polyphenol content was obtained at 354.02 mg GAE/g from the combination of parameters 50% solvent concentration, 10 minutes extraction time, and the ratio of horn banana peel powder to 1:8 g/mL solvent.
Kulit Pisang Tanduk ( Musa Corniculata ) merupakan salah satu tanaman unggulan di Indonesia yang kaya senyawa polifenol sebagai sumber  antioksidan.  Potensi  senyawa  polifenol  sebagai  antioksidan  inilah  yang  dapat  dimanfaatkan  sebagai  alternatif  untuk mengurangi  limbah  kulit  pisang.  Penelitian  ini  bertujuan  untuk  mengetahui  kandungan  total  polifenol  dan  aktivitas  antioksidan ekstrak kulit pisang tanduk. Ekstraksi menggunakan metode Microwave Assisted Extraction (MAE) dengan pelarut etanol dan variabel yaitu waktu ekstraksi (4, 7, dan 10 menit), konsentrasi pelarut (50, 73 dan 96 %), rasio massa simplisia terhadap volume pelarut (1:12, 1:8, 1:6 g/mL) dengan daya microwave sebesar 150 Watt. Penentuan kandungan polifenol menggunakan metode Folin-Ciocalteau dan kemampuan polifenol sebagai antioksidan dianalisis dengan uji DPPH. Penelitian ini menggunakan software Design Expert 13 Response Surface Methodology tipe Box Behnken untuk menentukan parameter ekstraksi terhadap kandungan total polifenol. Kandungan total polifenol tertinggi didapatkan 354,02 mg GAE/g dari kombinasi parameter konsentrasi pelarut 50%, waktu ekstraksi 10 menit, dan rasio bubuk Kulit Pisang Tanduk dengan pelarut 1:8 g/ mL.
Keywords: Banana peel, Polyphenols, MAE.

## PENDAHULUAN
Indonesia  merupakan  negara  dengan  kekayaan keanekaragaman  hayati  kurang  lebih  30.000  jenis tumbuhan,  dengan  7.500  termasuk  jenis  tanaman obat. Keanekaragaman hayati di Indonesia merupakan aset  bernilai  tinggi  dalam  pengembangan  industri agromedisin  dunia  [1].  Pisang  merupakan  salah  satu
buah  tropis  paling  banyak  dihasilkan  dan dimanfaatkan oleh masyarakat Indonesia yang menjadi komoditas buah-buahan pada urutan pertama diantara buah-buahan  lain  baik  dari  segi  penyebaran,  luas pertanaman maupun dari segi produksi. Hal tersebut karena  hampir  seluruh  wilayah  Indonesia  dapat ditanami pohon pisang [2]. Pisang adalah buah paling populer  di  seluruh  dunia  dengan  total  produksi  102
*) Corresponding author: Istiqomah Rahmawati E-mail: istiqomah.rahmawati@unej.ac.id

## Istiqomah, Polyphenol Extraction from Musa …
juta  ton  per  tahun  [3].  Sedangkan  total  produksi  di Indonesia  pada  tahun  2020  mencapai  8,18  juta  ton, jumlah  ini  meningkat  39%  dari  7,28  juta  ton  pada tahun 2019 [4]. Salah satu varietas pisang yang terdapat di  Indonesia  dan  termasuk  jenis  pisang  lokal  adalah pisang  tanduk  ( Musa  Corniculata )  [3].  Pisang  tanduk memiliki  ukuran  terbesar  diantara  komoditas  pisang lainnya yaitu memiliki panjang sekitar 25-40 cm, lebar 6-12  cm,  diameter  4,4-4,8  cm,  dengan  bobot  buah 300-320 g per buah dan berpotensi memiliki berat 15 kg  per  tandannya.  Bentuk  buah  pisang  tanduk  yang besar  panjang  dan  melengkung,  dapat  memberikan keuntungan  pada  hasil  olahan  menjadi  lebih  banyak jika dibandingkan dengan pisang lain yang berukuran lebih kecil. Selain dikonsumsi langsung sebagai buah, pisang  tanduk  dapat  dimanfaatkan  menjadi  berbagai jenis  olahan  seperti  keripik  pisang,  selai,  pembuatan tepung, dll [2]. Kulit pisang memiliki kandungan unsur gizi cukup lengkap, seperti karbohidrat (30 g), lemak (0,2-0,3  g),  protein  (1,3-1,5  g),  kalsium  (7,15  mg), fosfor (30 mg), zat besi (24 mg), vitamin A (60 mg), vitamin C (20 mg), dan air [5], [6] sehingga kulit pisang dapat  dimanfaatkan  untuk  pengobatan  berbagai penyakit seperti luka bakar, anemia, diare, maag, dan radang  [3].  Meskipun  memiliki  potensi  sumber  daya alam yang melimpah, namun potensi tersebut belum dimanfaatkan secara optimal [1]. Salah satunya seperti kulit buah pisang yang menyumbang sekitar 35% dari berat buah masih dianggap sebagai limbah yang dapat menimbulkan masalah lingkungan [7].
Di  alam  terdapat  senyawa  fenolik  yang  diketahui strukturnya  antara  lain  flavonoid,  fenol  monosiklik sederhana, fenil propanoid, polifenol (lignin, melanin, tanin), dan kuinon fenolik [8]. Kulit buah merupakan sumber polifenol, karotenoid, serta senyawa bioaktif lain  yang  baik  dan  menguntungkan  bagi  kesehatan manusia [7]. Dibandingkan dengan kulit buah seperti pada  alpukat,  markisa,  melon,  nanas,  pepaya,  dan semangka,  kulit  buah  pisang  memiliki  kandungan fenolik  tertinggi  [9],  dengan  total  jumlah  senyawa fenol pada kulit pisang adalah sekitar 0,90 sampai 3,0 g/100  g  DW  [10].  Berdasarkan  jenisnya,  polifenol terdiri dari lignin, melanin, tanin [11]. Akibat adanya aktivitas  enzim  polifenol  oksidase,  menjadikan senyawa  polifenol  mudah  teroksidasi  akibat  aktivitas enzim  polifenol  oksidase  [12].  Kelompok  senyawa fenol ini memiliki gugus hidroksil pada cincin benzene
yang  berperan  sebagai  antioksidan  dengan  daya antioksidan  yang  baik  karena  dapat  memberikan elektronnya untuk menetralkan elektron radikal bebas dalam  tubuh  [13],  [14].  Selain  itu,  polifenol  juga memiliki  banyak  fungsi  lainnya  diantaranya  sebagai antiinflamasi, antiproliferasi, antimutagenik, antimikrobial  [15],  dapat  mencegah/mengobati penyakit degeneratif, gangguan kognitif, penuaan dini, melindungi  terhadap  penyakit  kardiovaskuler  [16], merusak
DNA dan dapat menghentikan perkembangan sel kanker, meningkatkan sistem imun [17],  membantu  menurunkan  berat  badan,  serta meningkatkan kesehatan jantung [18].
Salah  satu  metode  pengambilan  suatu  komponen dari  bahan  alam  khususnya  tumbuhan  yang  paling banyak  digunakan  adalah  ekstraksi.  Ekstraksi  adalah proses  pemisahan  suatu  zat  dari  campurannya menggunakan  pelarut  yang  sesuai  [19].  Biasanya campuran  zat  padat  dan  cair  yang  sukar  dipisahkan dengan  metode  pemisahan  mekanis  maupun  termis, dapat menggunakan ekstraksi yaitu proses pemisahan paling  ekonomis  [20],  [21].  Pada  penelitian  ini, digunakan  MAE  ( Microwave  Assisted  Extraction )  yang merupakan  salah  satu  metode  pemisahan  yang memanfaatkan gelombang mikro untuk mempercepat proses ekstraksinya melalui pemanasan pelarut secara cepat  dan  efisien  [22],  [23].  Ekstraksi  mengunakan MAE  dapat  dipengaruhi  oleh  beberapa  parameter, seperti  diantaranya  suhu,  rasio  pelarut,  konsentrasi pelarut, dan tingkat daya gelombang mikro [24]. Jika dibandingkan  dengan  metode  konvensioal,  metode MAE  hanya  membutuhkan  waktu  yang  relatif   lebih singkat untuk proses ekstraksi kulit pisang [25], [27]. Hal tersebut dapat terjadi karena MAE menggunakan gelombang mikro yang dapat diserap air, lemak, dan gula  namun  tidak  dapat  diserap  bahan-bahan  gelas. Proses  ekstraksi  juga  dilakukan  secara  tertutup  yang dapat  mengurangi  uap  panas  [25].  Dibandingkan dengan  metode  ekstraksi  lainnya,  MAE  memiliki banyak keuntungan, diantaranya  waktu ekstraksi lebih singkat,  pelarut  lebih  sedikit,  hasil  ekstraksi  lebih optimal,  biaya  lebih  rendah,  dan  dapat  mengurangi emisi  karbon  dioksida  [28],  [30].  Berikut  ini merupakan  penelitian  terdahulu  mengenai  ekstraksi kulit  Pisang  yang  dapat  dilihat  pada  Tabel  1  dan ekstraksi polifenol menggunakan metode MAE yang disajikan pada Tabel 2.

## Istiqomah, Polyphenol Extraction from Musa …

## Tabel 1. Penelitian Terdahulu Ekstraksi Kulit Pisang
Bahan Baku Metode Ekstraksi Parameter Proses Hasil Referensi Kulit Pisang Kepok Metode Microwave Assisted Extraction (MAE) Proses ekstraksi dilakukan menggunakan pelarut HCl, berat bahan 10 dan 15 g, daya 600 Watt, waktu 20 menit, konsentrasi HCl 0,25% sebanyak 300 mL Kondisi optimum diperoleh saat berat bahan 15 g menghasilkan yield pektin sebanyak 16,53% w/w [27] Kulit Pisang  Metode Microwave Assisted Extraction (MAE) Proses ekstraksi dilakukan menggunakan asam sitrat 5%, waktu 5, 10, 15, 20, dan 25 menit. rasio bahan dan pelarut 1:50, daya 450 Watt Kondisi optimum diperoleh saat waktu ekstraksi 15 menit menghasilkan yield pektin sebanyak 27,55% [25] Kulit Pisang Raja Metode Maserasi Proses ekstraksi dilakukan menggunakan pelarut etanol 96% Kandungan total polifenol 3,50104 % b/v atau 35,0104 mg GAE/g ekstrak [31] Kulit Pisang Muli Dan Pisang Kepok Metode Maserasi Proses ekstraksi dilakukan menggunakan pelarut metanol Kandungan total fenolik kulit pisang muli adalah 108,336 mg GAE/g dan pisang kepok 32, 496 mg GAE/g [32] Kulit Pisang Metode Ultrasonic Assisted Method (UAE) Ekstraksi dilakukan menggunakan pelarut HCl 0,05 N sebanyak 400 mL dan suhu ekstraksi 60 °C. Adapun variasi massa sebesar 5, 10, 20, 30 dan 40 gram. Rendemen pektin tertinggi yang dihasilkan sebesar 25,59% [33]

## Tabel 2. Penelitian Terdahulu Ekstraksi Polifenol dengan Metode MAE
Bahan Baku Metode Ekstraksi Parameter Proses Hasil Referensi Herba Suruhan Metode Microwave Assisted Extraction (MAE)
Proses ekstraksi dilakukan menggunakan pelarut ( green solvent ) asam Malat-Glukosa dengan perbandingan 1:1 g/g, 1:2 g/g,
dan 1:4 g/g, daya microwave 30% selama 5 menit dengan rasio sampel dan pelarut 1:14 g/mL Kondisi optimum diperoleh pada perbandingan 1:3 g/g menghasilkan polifenol sebanyak 696 mg GAE/g [20] Teh Putih  Metode Microwave Assisted Extraction (MAE) Proses ekstraksi dilakukan menggunakan pelarut etanol 96% dengan lama waktu ekstraksi 2, 4, 6, dan 8 menit, level daya 70% atau 490 Watt Kondisi optimum diperoleh saat lama waktu ekstraksi 8 menit dengan level daya 70% dihasilkan kadar polifenol sebanyak 63,60% atau 1,30 mg/g [22] Teh Hijau  Metode Microwave Assisted Extraction (MAE) Proses ekstraksi dilakukan menggunakan 400 mL pelarut etanol 60%, 50 g ampas teh hijau, selama 8 menit, dan diulangi 8 kali Kondisi optimum diperoleh saat daya microwave 450 Watt, waktu 8 menit, perbandingan 1 : 8 menghasilkan kadar polifenol sebanyak 7,1 % [1] Umbi Bawang Dayak Metode Microwave Assisted Extraction (MAE) Proses ekstraksi dilakukan menggunakan pelarut Acid-Sucrose , perbandingan pelarut 1:1, 2:1, 3: 1, rasio sampel dengan pelarut 1:10, waktu 10 menit, power 50 % Kondisi optimum diperoleh pada perbandingan 1:3 g/g menghasilkan polifenol sebanyak 36,5 mg GAE/g sampel [24] Daun Kadamba Metode Microwave Assisted Extraction (MAE)
Proses ekstraksi dilakukan menggunakan pelarut ( green solvent ) choline chloride-sorbitol dengan perbandingan 1:1, 1:2. dan 1:3
g/g, rasio sampel dan pelarut 1:10 g/mL, daya microwave 50% selama 10 menit Kondisi optimum diperoleh pada perbandingan 1:2 g/g menghasilkan  sebanyak polifenol 372 mg GAE/g [29]

## Istiqomah, Polyphenol Extraction from Musa …
Berdasarkan  studi  literatur,  Ekstraksi  Polifenol Kulit Pisang Tanduk ( Musa Corniculata ) Menggunakan Metode  Microwave  Assisted  Extraction (MAE)  belum pernah  diteliti  sebelumnya.  Penelitian  ini  bertujuan untuk  menentukan  waktu,  konsentrasi  pelarut,  dan rasio  simplisia  terhadap  pelarut  yang  paling  optimal dalam menghasilkan kandungan polifenol .

## METODE PENELITIAN
Alat dan Bahan Bahan  yang  digunakan  pada  penelitian  ini  yaitu Kulit  Pisang  Tanduk (Musa  Corniculata) yang didapatkan  dari  Desa  Pakis,  Kecamatan  Panti, Kabupaten  Jember,  Provinsi  Jawa  Timur  dengan  10 hari  masa  pematangan  sejak  dipanen.  Etanol  96%, Akuades, FeCl 3 (p.a. Merck), Asam Galat (p.a. Merck), Na 2 Co 3 (p.a.  Merck),  Reagen  Folin-Ciocalteu  (p.a. Merck).  Gambar  Pisang  Tanduk  dapat  dilihat  pada Gambar 1.
Gambar 1. Buah Pisang Tanduk  [34] Alat  yang  digunakan  adalah  botol  timbang, microwave (SAMSUNG MS23H3125FK-SE; 1150W),  oven  (Envilife),  neraca  analitik  (Pioneer), blender  (Philips  HR-2115),  gelas  ukur  (Pyrex),  labu alat  bulat  (Duran),  pipet  tetes,  erlemeyer  (Pyrex), beaker  glass  (Pyrex),  botol  timbang,  kondensor, ayakan  80  mesh,  corong  kaca,  tabung  reaksi  &  rak, spektrofotometer  UV-Vis  752AP.  Skema  alat  MAE dapat dilihat pada Gambar 2.
Gambar  2.  Microwave  Assisted  Extraction  (MAE) [35]

## Prosedur Experimental Design
Serangkaian  percobaan  penelitian  dan  analisis respon  dilakukan  dengan  menggunakan  program Design-Expert  v13 menggunakan Response  Surface Methodology (RSM)  dengan Box-Behnken  Design (BBD) [36]. Dalam penelitian ini, variabel kontrol adalah daya microwave sebesar  150  Watt  [37]  dan  volume  pelarut sebanyak  100  mL  [38].  Variabel  bebas  yang dimasukkan  pada  program design  expert adalah  rasio massa  simplisia  terhadap  volume  pelarut  (1:12  -  1:6 g/mL),  konsentrasi  pelarut  (50  -  96  %)  dan  waktu ekstraksi  (4  -  10  menit)  [1],  [22].  Hasil  rancangan formulasi penelitian dengan design expert tercantum pada Tabel 3.
Tabel  3.  Hasil  Rancangan  Formulasi  Penelitian
Menggunakan Design Expert Run Konsentrasi Pelarut (%) Waktu Ekstraksi (menit) Rasio Massa Simplisia terhadap Volume Pelarut (g/mL) 1 96 7 1 : 6 2 73 7 1 : 8 3 50 7 1 : 12 4 73 4 1 : 12 5 73 7 1 : 8 6 73 4 1 : 6 7 73 7 1 : 8 8 50 4 1 : 8 9 73 10 1 : 6 10 73 7 1 : 8 11 96 7 1 : 12 12 73 10 1 : 12 13 73 7 1 : 8 14 96 10 1 : 8 15 96 4 1 : 8 16 50 7 1 : 6 17 50 10 1 : 8
Preparasi Sampel Sampel  kulit  pisang  tanduk  dicuci  bersih menggunakan  air  untuk  menghilangkan  pengotor yang menempel seperti getah dan debu. Sampel yang telah dibersihkan kemudian dikeringkan menggunakan oven pada suhu 50°C sampai kadar air di bawah 10% [31], dan selanjutnya dihaluskan sampai menjadi  sebuk  halus  menggunakan  blender  yang kemudian disaring menggunakan ayakan 80 mesh [39].
Ekstraksi  Menggunakan  Metode Microwave Assited Extraction (MAE)
Serbuk  kulit  Pisang  Tanduk  yang  telah  diberi perlakuan  awal  kemudian  ditimbang    berdasarkan

## Istiqomah, Polyphenol Extraction from Musa …
berat yang telah ditentukan yaitu 8,3 - 16 g, setelah itu dicampurkan 100 mL dengan konsentrasi etanol 50 - 96%. Campuran diekstraksi dengan bantuan microwave (SAMSUNG  MS23H3125FK-SE;  1150W)  dengan daya microwave 150 Watt dan waktu microwave 4 - 10 menit  [22].  Komponen  bioaktif   seperti  fenol, flavonoid,  dan  tanin  akan  mudah  rusak  pada  suhu diatas 50 °C. Hal ini terjadi karena daya yang terlalu tinggi dapat menyebabkan suhu panas yang tinggi pula sehingga dinding sel akan rusak dengan sangat cepat serta  menghasilkan  ekstrak  yang  rendah  [40],  [41]. Hasil ekstrak kemudian disaring menggunakan kertas saring untuk memisahkan filtrat dan residunya.

## Analisis Prosedur
Pengukuran Kadar Air Perhitungan kadar air dilakukan untuk mengetahui kandungan air dalam sampel. Pengeringan dilakukan dengan  oven  pada  suhu  100  ˚C  menggunakan  2  g sampel.  Pengeringan  dilakukan  sampai  diperoleh massa yang konstan [42]. Rumus perhitungan kadar air adalah sebagai berikut:
% 𝐾𝑎𝑑𝑎𝑟 𝑎𝑖𝑟
= (𝑚𝑎𝑠𝑠𝑎 𝑠𝑎𝑚𝑝𝑒𝑙 𝑎𝑘ℎ𝑖𝑟(𝑔)) − (𝑚𝑎𝑠𝑠𝑎 𝑠𝑎𝑚𝑝𝑒𝑙 𝑎𝑤𝑎𝑙(𝑔))
(𝑚𝑎𝑠𝑠𝑎 𝑠𝑎𝑚𝑝𝑒𝑙 𝑎𝑤𝑎𝑙(𝑔)) 𝑥 100 % (1)

## Uji Fitokimia
Uji fitokimia adalah metode pengujian awal untuk melihat  adanya  kandungan  senyawa  polifenol  dalam filtrat.  uji  fitokimia  dilakukan  dengan  cara,  larutan ekstrak sebanyak 1 mL direaksikan dengan beberapa tetes  larutan  besi  (III)  klorida  10%,  jika  terjadi perubahan  warna  menjadi  biru  tua,  biru  kehitaman atau  hitam  kehijauan  yang  menunjukkan  adanya senyawa polifenol [31], [43].
Analisis Kandungan Total Polifenol Pembuatan larutan standar dilakukan dengan cara, sebanyak  10  mg  asam  galat  ditambahkan  aquadest sampai 100 mL. Dari larutan tersebut dipipet 0,1; 0,2; 0,3; 0,4; dan 0,5 mL lalu ditambah 1 mL Reagen Folin Ciocalteu. Diamkan selama 5 menit, tambahkan 2 mL Na 2 CO 3 dan  aquades  sampai  volume  10  mL,  vortex hingga  homogen  lalu  inkubasi  selama  30  menit. Prosedur pembuatan larutan sampel dilakukan dengan cara  sebanyak  1,5  mL  sampel  diberi  perlakuan  sama sebagaimana larutan standar [1], [44] Tahap berikutnya adalah pengukuran absorbansi larutan blanko, standar,
dan  sampel  menggunakan  spektrofotometer  UV-Vis pada panjang gelombang 765 nm. Dilakukan dua kali pengulangan  dan  penentuan  total  polifenol menggunakan  persamaan  regresi  linear 𝑦 = 𝑎𝑥 + 𝑏 [38],  [45].  Rumus  perhitungan  total  polifenol  adalah sebagai berikut:
𝑇𝑃𝐶
(𝑚𝑔. 𝐺𝐴𝐸 𝑔 𝑒𝑘𝑠𝑡𝑟𝑎𝑘) = 𝐾𝑜𝑛𝑠𝑒𝑛𝑡𝑟𝑎𝑠𝑖 (𝑛𝑖𝑙𝑎𝑖 𝑋) 𝑥 𝑣𝑜𝑙𝑢𝑚𝑒  𝑠𝑎𝑚𝑝𝑒𝑙 (𝑚𝐿) 𝑥 𝑓𝑎𝑘𝑡𝑜𝑟 𝑝𝑒𝑛𝑔𝑒𝑛𝑐𝑒𝑟𝑎𝑛
𝑀𝑎𝑠𝑠𝑎 𝑠𝑎𝑚𝑝𝑒𝑙 (𝑔)
(2)

## Analisis Antioksidan menggunakan DPPH
Uji  aktivitas  antioksidan  dilakukan  dengan mengukur  nilai  aktivitas  hambatan  terhadap  radikal bebas DPPH menggunakan metode spektrofotometri UV-Vis  [46].  Larutan  blanko  dibuat  dengan mencampurkan  4  mg  DPPH  dan  etanol  sampai volume  100  mL  sehingga  menghasilkan  DPPH  0,1 mM.  Uji  sampel  dilakukan  dengan  cara  yang  sama yaitu  sebanyak  0,25  mL  larutan  ditambahkan  1  mL larutan  DPPH  dan  etanol  sampai  volume  3  mL, selanjutnya  ukur  absorbansinya  pada  panjang gelombang  maksimum  517  nm  [47,  48]. Rumus perhitungan DPPH adalah sebagai berikut:
𝐼𝑛ℎ𝑖𝑏𝑖𝑠𝑖  (%)
= 𝑎𝑏𝑠𝑜𝑟𝑏𝑎𝑛𝑠𝑖 𝑏𝑙𝑎𝑛𝑘𝑜 − 𝑎𝑏𝑠𝑜𝑟𝑏𝑎𝑛𝑠𝑖 𝑠𝑎𝑚𝑝𝑒𝑙 𝐴𝑏𝑠𝑜𝑟𝑏𝑎𝑛𝑠𝑖 𝑏𝑙𝑎𝑛𝑘𝑜 𝑥 100 % (3 )

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Uji Fitokimia Uji fitokimia merupakan tahap pendahuluan dalam suatu  penelitian  fitokimia  yang  bertujuan  memberi gambaran  mengenai  golongan  senyawa  yang terkandung dalam kulit pisang seperti alkaloid, tannin, polifenol,  flavonoid,  saponin,  dan  triterpenoid  [31]. Metode  uji  fitokimia  ini  dilakukan  dengan  melihat reaksi  pengujian  warna  dengan  menggunakan  suatu pereaksi  warna.  Pada  penelitian  ini,  didapatkan  hasil skrining fitokimia terhadap senyawa polifenol sampel uji  setelah  penambahan  FeCl 3 yaitu  terbentuknya warna  kuning  kehijauan,  yang  menandakan  bahwa jenis polifenol tersebut adalah senyawa flavonoid [43]. Hasil skrining fitokimia dapat dilihat pada Gambar 3.

## Istiqomah, Polyphenol Extraction from Musa …

## Gambar 3. Hasil Skrining Fitokimia
Ekstraksi  Kandungan  Total  Polifenol  dari  Kulit Pisang Tanduk Penelitian  dilaksanakan  pada  bulan  September 2022  sampai  dengan  April  2023  di  Laboratorium Dasar  dan  Proses,  Program  Studi  Teknik  Kimia, Jurusan  Teknik  Mesin,  Fakultas  Teknik,  Universitas Jember.  Penelitian  ini  menggunakan  Kulit  Pisang Tanduk  untuk  diekstraksi  dan  diuji  kandungan  total polifenolnya menggunakan metode ekstraksi Microwave  Assisted  Extraction (MAE).  Langkah  awal adalah  pengukuran  kadar  air  dengan  pengeringan menggunakan  2  g  bahan  pada  suhu  oven  100  ˚C, penimbangan dilakukan setiap selang waktu 30 menit sampai  massa  bahan  konstan.  Nilai  kadar  air  dari bahan Kulit Pisang Tanduk adalah 8,4%. Pengukuran
ini  dilakukan  karena  kadar  air  yang  tinggi berperangaruh terhadap waktu ekstraksi yang menjadi lebih lama karena harus menguapkan air pada bahan terlebih dahulu, kadar air yang baik adalah tidak lebih dari 10% [42]. Faktor-faktor yang mempengaruhi laju ekstraksi diantaranya adalah jenis pelarut, rasio bahan pelarut,  waktu,  suhu,  ukuran  partikel  dan  jumlah pelarut  yang  digunakan  [49].  Daya microwave juga memiliki pengaruh dimana semakin tinggi daya maka semakin  tinggi  pula  suhu,  namun  suhu  yang  terlalu tinggi dapat merusak senyawa fenol [32].
Uji kandungan total polifenol pada ekstraksi kulit pisang  dilakukan  dengan  menggunakan  metode Spektrofotometri  [23].  Penetapan  Kandungan polifenol secara spektrofotometri digunakan pereagen folin  ciocalteu.  Gugus  hidroksil  senyawa  fenolik bereaksi  dengan  reagen  folin  ciocalteu  membentuk kompleks molybdenum tungsten blue berwarna biru yang dapat dideteksi menggunakan spektrofotometer. Penambahan  Na 2 CO 3 7,5%  pada  proses  penentuan kandungan  polifenol  bertujuan  untuk  membuat kondisi  larutan  basa,  hal  tersebut  dikarenakan polifenol  dan  folin  ciocalteu  hanya  dapat  bereaksi dalam  kondisi  basa  [45].  Persamaan  linear  kurva standar asam galat yang digunakan untuk menentukan kandungan total polifenol sampel adalah y = 0,1016x +  0,1652  (R 2 =  0,9924).  Nilai  R 2 yang  mendekati  1 menunjukkan  bahwa  persamaan  regresi  telah mendekati  linearitas  [50],  [51]. Hasil  analisis kandungan  polifenol  Kulit  Pisang  Tanduk  dapat dilihat pada Tabel 4.
Tabel 4. Kandungan total polifenol dalam filtrate hasil ekstraksi Kulit Pisang Tanduk
Run Konsentrasi pelarut (%) Waktu Ekstraksi (menit) Rasio Massa Simplisia terhadap Volume Pelarut (g/mL) Kandungan Total Polifenol (mg GAE/g sampel) 96 7 1 : 6 117,98 73 7 1 : 8 202,45 50 7 1 : 12 172,43 73 4 1 : 12 128,79 73 7 1 : 8 228,46 73 4 1 : 6 92,54 73 7 1 : 8 222,27 50 4 1 : 8 84,04 73 10 1 : 6 171,95 73 7 1 : 8 224,99 96 7 1 : 12 126,43 73 10 1 : 12 202,13 73 7 1 : 8 228,99 96 10 1 : 8 119,30 96 4 1 : 8 217,99 50 7 1 : 6 107,99 50 10 1 : 8 354,02

## Istiqomah, Polyphenol Extraction from Musa …
Tabel  4  menunjukkan  bahwa  kandungan  total polifenol terendah didapatkan 84,04 mg GAE/g dan kandungan total polifenol tertinggi didapatkan 354,02 mg GAE/g. Ditunjukkan bahwa adanya penambahan waktu  ekstraksi  ini  menyebabkan  peningkatan kandungan  total  polifenol  dengan  konsentrasi  50% dan rasio simplisia pelarut 1:8 g/ mL. Pada variasi rasio simplisia  pelarut,  semakin  banyak  massa  simplisia maka semakin banyak pula senyawa polifenol namun massa  yang  terlalu  banyak  menyebabkan  penurunan kandungan polifenol. Dari hasil penelitian, pada rasio optimum  1:8  didapatkan  rata-rata  kandungan polifenol yang tinggi. Hal ini sesuai dengan Handayani [1]  dan  Zhang  [52]  bahwa  massa  yang  yang  terlalu banyak menyebabkan semakin sulit senyawa polifenol terekstraksi
akibat adanya kompetisi antar  molekul  fenol.  Pada  variasi  waktu,  pengaruh semakin  lama  waktu  ekstraksi  maka  semakin  banyak total  polifenol.  Hal  ini  dikarenakan  semakin  lama kontak  simplisia  dan  pelarut  dapat  meningkatkan kelarutan bahan yang diekstrak. Hasil uji kandungan polifenol  paling  tinggi  pada  waktu  10  menit.  Pada variasi  konsentrasi  etanol  diperoleh  semakin  besar
konsentrasi  pelarut  maka  semakin  semakin  kecil kandungan  polifenol  yang  dihasilkan.  Dari  hasil penelitian  yang  kami  lakukan,  konsentrasi  optimum sebesar  50%  yang  menghasilkan  polifenol  tertinggi. Hal  ini  dikarenakan  jenis  polifenol  yang  ada  dalam kulit  pisang  adalah  flavonoid  berdasarkan  hasil  uji fitokima.  Senyawa  ini  bersifat  polar  sehingga  perlu dilarutkan  dalam  pelarut  polar.  H 2 O  merupakan senyawa yang paling polar, namun dalam penelitian ini tidak  digunakaan  H 2 O  100%  sebagai  pelarut  karena berdasarkan  Padmawati  [53]  ekstraksi  menggunakan pelarut  H 2 O  dapat  mengekstraksi  komponen  polar lainnya  seperti  karbohidrat,  dll  sehingga  kandungan polifenol yang dihasilan rendah. Hasil uji kandungan polifenol paling tinggi pada konsentrasi 50%. Hal ini sesuai dengan penelitian yang dilakukan Handayani [1] yang  mana  dengan  perbandingan  1  :  8,  konsentrasi etanol 60%, dan waktu ekstraksi 8 menit menghasilkan kandungan total polifenol tertinggi.
Kandungan  total  polifenol  yang  diperoleh  dari penelitian ini lebih tinggi jika dibandingkan penelitian ekstrak polifenol jenis kulit pisang lainnya.
Tabel 5. Kandungan total polifenol pada jenis kulit pisang Jenis Kulit Pisang Metode ekstraksi Hasil Referensi Kulit pisang Raja Maserasi 35 mg GAE/g sampel [31] Kulit pisang Muli Maserasi 108,336 mg GAE/g sampel [54] Kulit pisang Kepok Maserasi 32,496 mg GAE/g sampel [54] Kulit pisang kapas ferric reducing antioxidant power (FRAP) 28 mg GAE/g sampel [55] Kulit pisang Agung Maserasi 40 mg GAE/g sampel [56] Kulit pisang Tanduk Microwave assisted extraction (MAE) 354,02 mg GAE/g sampel (Penelitian yang dilakukan) Tabel 6. Hasil Analysis of Variance (ANOVA) Source Sum of Squares df Mean Square F-value p-value Model 82365,54 9 9151,73 47,16 < 0,0001 significant A-pelarut 3072,50 1 3072,50 15,83 0,0053 B-waktu 12803,20 1 12803,20 65,97 < 0,0001 C-rasio simplisa terhadap pelarut 2639,74 1 2639,74 13,60 0,0078 AB 34720,73 1 34720,73 178,91 < 0,0001 AC 624,75 1 624,75 3,22 0,1159 BC 9,21 1 9,21 0,0475 0,8338 A² 3472,94 1 3472,94 17,90 0,0039 B² 108,43 1 108,43 0,5587 0,4791 C² 23498,10 1 23498,10 121,08 < 0,0001 Residual 1358,50 7 194,07 Lack of Fit 214,75 3 71,58 0,2503 0,8578 not significant Pure Error 1143,75 4 285,94 Cor Total 83724,03 16

## Istiqomah, Polyphenol Extraction from Musa …
Tabel 5 menunjukkan perbedaan hasil kandungan total polifenol pada setiap jenis pisang, pada penelitian ini menggunakan jenis kulit pisang tanduk dihasilkan kandungan total polifenol tertinggi sebesar 354,02 mg GAE/g dengan menggunakan metode microwave assited extraction (MAE). Perbedaan kandungan total polifenol yang dihasilkan disebabkan karena adanya perbedaan kondisi ekstraksi dan faktor lain yang mempengaruhi proses ekstraksi, salah satunya adalah jenis kulit pisang yang diekstraksi [57], [58].

## Analisis Statistika
Data kandungan total polifenol kemudian dianalisis dengan Analysis  of   Variance (ANOVA)  untuk membuktikan bahwa parameter yang digunakan dalam proses ekstraksi dapat memengaruhi kandungan total polifenol. Hasil ANOVA disajikan pada Tabel 6.
Parameter  dapat  dikatakan  signifikan  jika  nilai probabilitas( p-value ) dari hasil analisis ≤ 0,05 atau 5% daan  nilai  lack  of   fit  dengan p-value ≥ 0,05 [60]. Berdasarkan  tabel  5  diperoleh  menggunakan software Design  Expert .  Nilai  F-Model  sebesar  47,16 mengimplikasikan  model  tersebut  signifikan.  Hanya ada  kemungkinan  0,01%  bahwa  nilai  F  sebesar  ini dapat  terjadi  karena noise . P-value model  diperoleh  < 0,0001, hal ini menunjukkan bahwa model signifikan. Model  yang  signifikan  menunjukkan  bahwa  model tersebut  memiliki  pengaruh  nyata  terhadap  respon kandungan total polifenol [60]. Sementara nilai p-value lack  of   fit  sebesar  0,8578  atau  85,78%  yang menandakan  bahwa  tidak  signifikan.  Lack  of   fit merupakan penyimpangan antara data eksperimen dan data  model  prediksi.  Nilai  p  >  0,05  menandakan bahwa model cukup menggambarkan data eksperimen dan tidak ada penyimpangan pada model [61].
Tabel 7. Model Summary
R 2 R 2 adjusted R 2 predicted 0,9838 0,9629 0,9376
Hasil  penelitian  dapat  dinyatakan  sesuai  model apabila  nilai  R 2 yang  dihasilkan  melebihi  0,75  atau mendekati  1  [50,  51,  62,  63].  Hasil  ANOVA menghasilkan  nilai  R  sebesar  0,9838  yang menunjukkan bahwa model telah sesuai dengan hasil penelitian.  Nilai  R 2 adjusted yang  diperoleh  sebesar 0,9629 menunjukkan bahwa terdapat hubungan yang kuat  antara  parameter  konsentrasi  pelarut,  waktu ekstraksi dan rasio serbuk Kulit Pisang Tanduk dengan
pelarut  terhadap  respon  kandungan  total  polifenol [60].
Kandungan  total  polifenol  sebagai  respon  dari parameter  ekstraksi  dimodelkan  menggunakan Persamaan berikut.
Kandungan total polifenol = 228,63 − 19,60𝐴 + 40,01𝐵 − 18,16𝐶 − 93,17𝐴𝐵 + 12,50𝐴𝐶 + 1,52𝐵𝐶 − 28𝐴 2 − 5,07𝐵 2 − 74,70𝐶 2 (4)
Keterangan:
A= Konsentrasi Pelarut B= Waktu ekstraksi C=  Rasio  serbuk  kulit  pisang  tanduk  dengan pelarut
Nilai  A,  B,  dan  C  secara  berurutan  merupakan parameter  konsentrasi  pelarut,  waktu  ekstraksi  dan rasio  serbuk  kulit  pisang  tanduk  dengan  pelarut. Apabila  koefisien  parameter  bernilai  negative  maka terdapat  penurunan  nilai  pada  kandungan  total polifenol,  berlaku  juga  sebaliknya  [60].  Berdasarkan persamaan  4,  semua  parameter  ekstraksi  secara statistik  berpengaruh  terhadap  kandungan  total polifenol. Hubungan antara data eksperimen dengan data model dapat dilihat pada Gambar 4.
Gambar 4. Data eksperimen vs data model Gambar  4  menunjukkan  bahwa  data  eksperimen dengan  data  prediksi  model  sangat  akurat,  terdapat korelasi  yang  kuat  data  eksperimen  dengan  data model.  Jarak  letak  data  terhadap trendline menunjukkan  keakuratan  data.  Semakin  dekat  data dengan  garis  maka  data  akan  semakin  akurat  [64]. Berdasarkan  penelitian  ini,  plot  data  menyinggung garis menunjukkan bahwa data eksperimen mendekati data model, didukung dengan nilai R2 sebesar 0,9838.

## Istiqomah, Polyphenol Extraction from Musa …

## Pengaruh Parameter Ekstraksi terhadap Total Polifenol
(a) (b) (c)
Gambar 5. a). Pengaruh konsentrasi pelarut dengan waktu ekstraksi terhadap kandungan total polifenol,  b).  Pengaruh  konsentrasi  pelarut  dengan  rasio  bahan  terhadap kandungan  total  polifenol,  c).  Pengaruh  waktu  ekstraksi  dengan  rasio  bahan terhadap kandungan total polifenol
Gambar  5  merupakan  grafik  yang  menunjukkan pengaruh dari setiap parameter ekstraksi (konsentrasi pelarut, waktu ekstraksi, dan rasio serbuk kulit pisang tanduk  dengan  pelarut)  terhadap  kandungan  total polifenol.  Gambar  5(a)  menunjukkan  pengaruh konsentrasi  dan  waktu  terhadap  total  polifenol, semakin  rendah  konsentrasi  pelarut  dan  lamanya waktu  ekstraksi  maka  semakin  tinggi  total  polifenol yang dihasilkan. Gambar 5(b) menunjukkan pengaruh konsentrasi  pelarut  dan  rasio  bahan  terhadap  total polifenol,  semakin  rendah  konsentrasi  dan  tingginya rasio bahan maka semakin tinggi total polifenol yang dihasilkan.    Gambar  5(c)  menunjukkan  pengaruh waktu  ekstraksi  dan  rasio  bahan  terhadap  total polifenol, semakin lama waktu ekstraksi dan tingginya rasio bahan maka semakin tinggi total polifenol yang
hasilkan.  Ketiga gambar tersebut menunjukkan bahwa terdapat  kombinasi  parameter  yang  mempengaruhi nilai  respon  melalui  adanya  perbedaan  warna. Kandungan total polifenol optimum yang dihasilkan dari penelitian ini sebesar 354,02 mg GAE/g sampel. Berdasarkan  total  polifenol  yang  didapatkan diperkirakan  bahwa  ekstraksi  total  polifenol maksimum dapat dicapai ketika kombinasi kosentrasi pelarut,  waktu  ekstraksi  dan  rasio  yakni  konsentrasi 50%, waktu ekstraksi 10 menit dan rasio simplisia 1:8. Menurut penelitian yang dilakukan oleh Handayani [1] menggunakan  ampas  teh  hijau  menyatakan  bahwa hasil ekstraksi polifenol yang optimum diperoleh dari konsentrasi pelarut 60%, waktu ekstraksi 8 menit dan rasio simplisia 1:8. Berdasarkan kandungan polifenol yang didapatkan semakin lama waktu ekstraksi maka

## Istiqomah, Polyphenol Extraction from Musa …
semakin tinggi kandungan kandungan total polifenol yang diperoleh [65]. Hal ini sesuai dengan penelitian yang dihasilkan yakni waktu ekstraksi 10 menit untuk menghasilkan total polifenol optimum. Namun waktu ekstraksi  yang  terlalu  lama  perlu  diperhatikan  agar menghindari rusaknya senyawa karena meningkatnya suhu dalam proses ekstraksi [66]. Hal tersebut selaras dengan  penilitian  oleh  Anal  [67]  yang  menyatakan bahwa  suhu  yang  tinggi  serta  waktu  ekstraksi  yang lebih  lama,  beberapa  senyawa  fenolik  kemungkinan akan  teroksidasi  dan  mengalami  penurunan  hasil ekstrak. Kerusakan senyawa polifenol ditandai dengan tidak  terdektesinya  ketika  dilakukan  uji  polifenol menggunakan  spektrofotometer.  Suhu  rendah  juga menghasilkan ekstrak tidak maksimal sehingga ekstrak polifenol yang didapatkan rendah [41].
Rasio bahan dengan pelarut merupakan hal krusial dikarenakan  jumlah  pelarut  yang  digunakan  harus cukup  dalam  melarutkan  senyawa  yang  diinginkan [68].  Berdasarkan  penelitian  Yingngam  [69] menyatakan  bahwa  terjadi  kenaikan  kandungan  total polifenol  pada  penggunaan  rasio  bahan  dengan pelarut dari 1:30 hingga ke 1:50 g/mL menggunakan bantuan  metode  ekstraksi  ultrasound.  Namun  pada penelitian menggunakan metode berbantuan microwave rasio optimum yang dihasilkan yakni 1:8. Hal ini sesuai dengan penelitian yang dilakukan oleh Handayani [1] menggunakan ampas the hijau dengan variasi  rasio  simplisia  1:8  hingga  1:14  didapatkan kondisi optimum pada rasio simplisia 1:8 g/ mL.

## Aktivitas  Antioksidan  Total  Polifenol  Ekstrak Kulit Pisang
Aktivitas  antioksidan  diperlukan  untuk  meredam efek  negatif   dari  radikal  bebas.  Antioksidan  adalah molekul  yang  mendonorkan  elektronnya  kepada molekul radikal bebas, sehingga dapat menghentikan reaksi  radikal  bebas  [10].  Beberapa  ekstrak  tanaman memiliki  antioksidan  seperti  fenolik,  flavonoid  yang lebih efektif  dan aman dari pada antioksidan sintetis [48].  Uji  aktivitas  antioksidan  menggunakan  metode DPPH  karena  merupakan  metode  yang  sederhana, mudah,  cepat,  dan  memerlukan  sedikit  sampel  [10]. Serapan  diukur  dengan  panjang gelombang  517  nm. Apabila  sampel  yang  diuji  memiliki  aktivitas antioksidan akan mengakibatkan terjadinya perubahan warna  larutan  DPPH  yang  semula  berwarna  ungu pekat menjadi kuning pucat. Untuk melihat ada atau tidaknya  kemampuan  antioksidan  pada  senyawa
polifenol  dapat  dilihat  menggunakan  %  inhibisi. Persen  inhibisi  merupakan  kemampuan  suatu antioksidan  dalam  menghambat  radikal  bebas,  jadi semakin  besar  persentase  inhibisi  sampel  maka semakin  tinggi  pula  aktivitas  antioksidannya. Berdasarkan penelitian yang dilakukan oleh Lushaini [70],  nilai  aktivitas  antioksidan  berbanding  lurus terhadap  kandungan  total  polifenol.  Semakin  besar kandungan  polifenol,  maka  kekuatan  antioksidannya juga  semakin  meningkat. Hal  ini  sesuai  dengan  hasil uji,  kandungan  polifenol  tertinggi  pada  run  17 memiliki % inhibisi yaitu sebesar 33,672 %.

## KESIMPULAN
Pada  penelitian  ini,  ekstrak  kulit  pisang  tanduk diperoleh  menggunakan  metode Microwave  Assisted Extraction (MAE).  Penentuan  kandungan  polifenol menggunakan metode
Folin-Ciocalteau dan kemampuan  polifenol  sebagai  antioksidan  dianalisis dengan uji DPPH. Berdasarkan hasil penelitian, dapat disimpulkan  bahwa  parameter  ekstraksi  (konsentrasi pelarut,  waktu  ekstraksi,  dan  rasio  simplisia) berpengaruh  terhadap  kandungan  total  polifenol. Kandungan  total  polifenol  tertinggi  dari  hasil penelitian  ini  adalah  354,02  mg  GAE/g  sampel dengan  aktivitas  antioksidannya  sebesar  33,672  % yang diperoleh pada kondisi konsentrasi pelarut 50%, waktu ekstraksi 10 menit dan rasio simplisia 1:8 g/ mL. Hasil  ini  dapat  dimanfaatkan  dalam  pengembangan obat-obatan  yang  mengandung  senyawa  bioaktif polifenol  maupun  penelitian  terkait  dengan kulit pisang tanduk.

## DAFTAR PUSTAKA
[1]  D. Handayani, A. Mun, and A. S. Ranti, “Optimation of  green tea waste extraction using microwave assisted extraction  to  yield  green  tea  extract,” Traditional Medicine Journal , vol. 19, no. 1, P. 2014, 2014.
[2]  D. Desmawarni and F. Hanum Hamzah, “Variasi suhu dan waktu ekstraksi terhadap kualitas pektin dari kulit pisang tanduk,” JOM Faperta UR , vol. 4, no. 1, PP. 1- 15, 2017.
[3]  H.  T.  Vu,  C.  J.  Scarlett,  and  Q.  v.  Vuong,  “Phenolic compounds  within  banana  peel  and  their  potential uses: a review,” J Funct Foods , vol. 40, pp. 238-248, Jan 2018.
[4]  “Produksi  Pisang  Indonesia  2020,” Badan  Pusat Statistik , 2021.

## Istiqomah, Polyphenol Extraction from Musa …
[5]  E. N. Alozie, I. Okereke, and G. Anozie, “Nutritional analysis and sensory properties of  pudding produced from two plantain varieties, French plantain (Platano hembra) and French horn Plantian (Banana blanche) in  Michael  Okpara  University  of   agriculture, Umudike,” International Journal of  Home Science , vol. 6, no. 2, pp. 286-290, 2020.
[6]  T.  F.  M.  T.  Supriyanti,  H.  Suanda,  and  R.  Rosdiana,
“Pemanfaatan  ekstrak  kulit  pisang  kepok  ( Musa Bluggoe )  sebagai  sumber  antioksidan  pada  produksi tahu,” Seminar Nasional Kimia dan Pendidikan Kimia VII , pp. 393-400, 2015.
[7]  A. M. Aboul-Enein, Z. A. Salama, A. A. Gaafar, H. F. Aly,  F.  A.  Bou-Elella,  and  H.  A.  Ahmed,
“Identification of  phenolic compounds from banana peel  ( Musa  Paradaisica L.)  as  antioxidant  and antimicrobial Agents,” J Chem Pharm Res , vol. 8, no. 4, pp. 46–55, 2016.
[8]  M. Tahir, A. Muflihunna, and Syafrianti, “Penentuan kadar  fenolik  total  ekstrak  etanol  daun  nilam (Pogostemon  cablin  Benth.)  dengan  metode spetrofotometri UV-VIS,” Jurnal Fitofarmaka Indonesia , vol. 4, no. 1, pp. 215-218, 2017.
[9]  F. Chaudhry et al. , “Extraction and evaluation of  the antimicrobial  activity  of   polyphenols  from  banana peels  employing  different  extraction  techniques,” Separations , vol. 9, no. 7, Jul 2022.
[10] Rosida  dan  A.  R.  Diyan,  “Penentuan  aktivitas antioksidan  dan  kadar  fenol  total  pada  ekstrak  kulit buah pisang ( Musa acuminata Colla ),” Akademi Farmasi Jember , pp. 26-33, 2016.
[11] H.  B.  H.  F.  Siddiq,  J.  Riyuwani,  dan  R.  D.  Y.  Dewi,
“Penentuan  Kadar  Polifenol  Ekstrak  Teh  Kemasan dengan Metode Remaserasi
menggunakan
Spektrofotometri UV-VIS,” Jurnal Ilmiah Kesehatan , vol.
2, no. 1, pp. 7-13, 2017.
[12] J.  Towaha,  “Kandungan  senyawa  polifenol  pada  biji kakao  dan  konstribusinya  terhadap  kesehatan,” SIRINOV , vol. 2, no. 1, pp. 1-6, 2014.
[13] D.  Dhianawaty  and  Ruslin,  “Kandungan  total polifenol  dan  aktivitas  antioksidan  dari  ekstrak metanol  akar Imperata  Cylindrica (L)  Beauv.  (Alang- alang),” Majalah Kedokteran Bandung , vol. 47, no. 1, pp. 60-64, 2015.
[14] Baihakki,  T.  Wikanta,  and  Feliatra,  “Extraction  of polyphenol  from sargassum sp.  and  its  entrapment  in the nanochitosan,” 2015.
[15] N. B. Nugraha, M. Faisal, and H. Herman, “Optimasi Metode  MAE  terhadap  Kadar  Polifenol  dan  Profil KLT dari Rimpang Jahe Merah (Zingiber officinale),” Proceeding of  Mulawarman Pharmaceuticals Conferences , vol.
15, pp. 149-154, Mei 2022.
[16] Yulianis,  E.  Fitriani,  and  M.  Sanuddin,  “Penetapan kadar polifenol ekstrak dan fraksi kulit pinang ( Areca Catechu L.) dengan metode spektrofotometri UV-VIS,” Journal of  Healthcare Technology and Medicine , vol. 6, no. 1, pp. 170-178, 2020.
[17] H.  B.  H.  F.  Siddiq,  R.  D.  Y.  Dewi,  and  J.  Riyuwani,
“Polifenol Ekstrak Teh Tubruk Kemasan menggunakan  Spektrofotometri  UV-VIS,” Jurnal Ilmiah Kesehatan , vol. 1, no. 2, pp. 7-13, 2016.
[18] R. Firyanto, S. Mulyaningsih, W. Leviana, J. Pawiyatan, L. Bendan, and D. Semarang, “Pengambilan polifenol dari teh hijau ( Camellia Sinensis ) dengan cara ekstraksi menggunakan  aquadest  sebagai  pelarut,” Prosiding SNST , pp. 10-13, 2019.
[19] Mukhriani,  “Ekstraksi,  pemisahan  senyawa,  dan identifikasi senyawa aktif,” Jurnal Kesehatan , vol. 7, pp. 361-367, 2014.
[20] M.  Safruddin,  N.  Mita,  and  I.  Ahmad,  “Ekstraksi polifenol total dari herba suruhan ( Pepperomia pellucida (L)  Kunth.)  menggunakan  malic  acid-glucose  based microwave  assisted  extraction,” Proceeding  of Mulawarman Pharmaceuticals Conferences , pp. 54-57, 2020.
[21] A. Yusniah, Y. Nur, and I. Ahmad, “Ekstraksi polifenol total dari herba suruhan ( Pepperomia pellucida (L) kunth.) menggunakan  malic  acid-glucose  based  microwave assisted  extraction,” Proceeding  of   Mulawarman Pharmaceuticals Conferences , pp. 147-150, 2019.
[22] A. Widyasanti, H. Aryadi, and D. Rohdiana, “Pengaruh perbedaan  lama  ekstraksi  teh  putih  dengan menggunakan  metode Microwave  Assisted  Extraction (MAE),” Jurnal Teknologi Pertanian Andalas , vol. 22, no.
2, pp. 165-174, 2018.
[23] M. Nadir and E. I. Risfani, “Pengaruh waktu terhadap ekstraksi pektin dari kulit pisang kepok dengan metode Microwave Assisted Extraction (MAE),” Prosiding Seminar Hasil Penelitian , pp. 92-98, 2018.
[24] K.  Kurnya,  H.  Hajrah,  and  I.  Ahmad,  “Ekstraksi polifenol  total  dari  umbi  bawang  dayak  ( Eleutherine bulbosa [Mill.] Urb.) menggunakan metode lactic acid- sucrose based Microwave Assisted Extraction ,” Proceeding of   Mulawarman  Pharmaceuticals  Conferences ,  vol.  10,  pp. 118-121, Okt 2019.
[25] V. A. Devianti and D. Arifiyana, “Optimasi lama waktu ekstraksi dengan metode MAE pada pektin dari kulit pisang,” Journal  of   Herbal,  Clinical  and  Pharmaceutical Science (HERCLIPS) , vol. 3, no. 01, p. 21, Okt 2021.
[26] P. Rodsamran and R. Sothornvit, “Microwave heating extraction of  pectin from lime peel: characterization and  properties  compared  with  the  conventional heating method,” Food Chem , vol. 278, hlm. 364–372, Apr 2019.
[27] Megawati and E. L. Machsunah, “Ekstraksi pektin dari kulit  pisang  kepok  ( Musa  paradisiaca )  menggunakan

## Istiqomah, Polyphenol Extraction from Musa …
pelarut  HCl  sebagai  edible  film,” Jurnal  Bahan  Alam Terbarukan , vol. 5, no. 1, pp. 14-21, 2016.
[28] S.  J.  Astati,  M.  Ardana,  and  I.  Ahmad,  “Ekstraksi polifenol  total  dari  umbi  bawang  dayak  ( Eleutherine bulbosa [Mill.] Urb.) Menggunakan metode citric acid- glucose based Microwave Assisted Extraction ,” Proceeding of   Mulawarman  Pharmaceuticals  Conferences ,  vol.  10,  pp. 139-142, Okt 2019.
[29] R. Hidayati, D. Rahmawati, and I. Ahmad, “Ekstraksi polifenol total dari daun kadamba (Mitragyna speciosa Korth)  menggunakan  metode  choline  chloride- sorbitol based Microwave Assisted Extraction ,” Proceeding of   Mulawarman  Pharmaceuticals  Conferences ,  vol.  10,  pp. 131-134, Okt 2019.
[30] K. A. T. Datu, N. Fitriani, and I. Ahmad, “Pengaruh penggunaan  metode  lactic  acid-sucrose    dengan Microwave Assisted Extraction (MAE) terhadap polifenol total    dari  herba  suruhan  ( Peperomia  Pellucida (L.) Kunth),” Proceeding  of   Mulawarman  Pharmaceuticals Conferences , vol. 10, pp. 114-117, Okt 2019.
[31] I.  Adhayanti,  T.  Abdullah,  R.  Romantika,  and  J.
Farmasi  Poltekkes  Kemenkes  Makassar,  “Uji kandungan  total  polifenol  dan  falvonoid  ekstrak  etil asetat  kulit  pisang  raja  ( Musa  Paradisiaca var. Sapientum),” Media Farmasi , vol. XIV, no. 1, pp. 146- 152, 2018.
[32] F.  Yulistiani,  R.  Khairiyyah  Azzahra,  and  Y.  Alhay Nurhafshah, “Pengaruh daya dan waktu terhadap yield hasil ekstraksi minyak daun spearmint menggunakan metode Microwave  Assisted  Extraction ,” Jurnal  Teknik Kimia dan Lingkungan , vol. 2020, no. 1, pp. 1–6, 2020.
[33] A.  Adhiksana,  “Perbandingan  metode  konvensional ekstraksi pektin dari kulit buah pisang dengan metode ultrasonik,” Journal of  Research and Technology , vol. 3, no. 2, 2017.
[34] Y. S. Poerba, “Katalog Pisang,” LIPI Press , pp. 1-215, 2016.
[35] M.  Saifullah,  R.  McCullum,  and  Q.  van  Vuong, “Optimization  of   microwave  assisted  extraction  of polyphenols  from  lemon  myrtle:  comparison  of modern and conventional extraction techniques based on bioactivity and total polyphenols in dry extracts,” Processes , vol. 9, no. 12, pp. 1-19, Des 2021.
[36] S. Polat and P. Sayan, “Application of  response surface methodology with a box–behnken design for struvite precipitation,” Advanced Powder Technology , vol. 30, no. 10, pp. 2396-2407, Okt 2019.
[37] R. P. Sihombing, A. P. Tamba, C. A. Renata,  and A. Ngatin,  “Ekstraksi  daun  tembakau  dengan  metode MAE  ( Microwave  Assisted  Extraction )  dengan  variasi jenis pelarut dan waktu ekstraksi pada daya microwave 150 watt,” Prosiding The 13th Industrial Research Workshop and National Seminar , pp. 807-812, 2022.
[38] E.  Padamani,  J.  Ngginak,  and  A.  T.  Lema,  “Analisis kandungan polifenol pada ekstrak tunas bambu betung ( Dendrocalamus  asper ),” Bioma :  Jurnal  Biologi  dan Pembelajaran Biologi , vol. 5, no. 1, pp. 52-65, Mar 2020. [39] H. Dong dkk. , “Physicochemical properties of  pectin extracted  from  navel  orange  peel  dried  by  vacuum microwave,” LWT , vol. 151, Nov 2021.
[40] F.  A.  Ulhusna,  D.  Syafrianti,  U.  Moricha,  and  A. Safriani,  “Profil  fitokimia  dan  aktivitas  aktioksidan ekstrak  air  daun Tegetes  Erecta L.,” Jurnal  Pendidikan Sains dan Biologi , vol. 9, no. 1, pp. 690-694, 2022.
[41] N. W. A. Yuliantari, I. W. R. Widarta, and I. D. G. M. Permana,  “Pengaruh  suhu  dan  waktu  ekstraksi terhadap  kandungan  flavonoid  dan  aktivitas antioksidan  daun  sirsak  ( Annona  muricata L.) menggunakan  ultrasonik,” Media  Ilmiah  Teknologi Pangan , vol. 4, no. 1, pp. 35-42, 2017.
[42] W. Ramadhan, U. Uju, S. D. Hardiningtyas, R. F. Pari, N.  Nurhayati,  and  D.  Sevica,  “Ekstraksi  polisakarida ulvan  dari  rumput  laut  ulva  lactuca  berbantu gelombang  ultrasonik  pada  suhu  rendah,” J  Pengolah Has  Perikan  Indones ,  vol.  25,  no.  1,  pp.  132-142,  Apr 2022.
[43] I. Illing, W. Safitri, and Erfiana, “Uji fitokimia ekstrak buah dengen,” Jurnal Dinamika , vol. 8, no. 1, pp. 66-84, 2017.
[44] I. Norra, A. Aminah, and R. Suri, “Effects of  drying methods,  solvent  extraction  and  particle  size  of Malaysian brown seaweed, Sargassum sp. on the total phenolic  and  free  radical  scavenging  activity,” International  Food  Research  Journal ,  vol.  23,  no.  4,  pp. 1558-1563, 2016.
[45] A. Guntarti, “Kadar polifenol total ekstrak etanol kulit buah  manggis  ( Garcinia  mangostana )  pada  variasi  asal daerah,” Jurnal  Farmasi  dan  Ilmu  Kefarmasian  Indonesia , vol. 3, no. 1, pp. 22-25, 2016.
[46] S. R. Jami’ah, M. Ifaya, J. Pusmarani, and E. Nurhikma, “Uji aktivitas antioksidan ekstrak metanol kulit pisang raja ( Musa Paradisiaca sapientum ) dengan metode DPPH (2,2-Difenil-1-Pikrilhidrazil),”
Jurnal Mandala
Pharmacon Indonesia , vol. 4, no. 1, pp. 33-38, 2018.
[47] H. Widyowati, M. Ulfah, and Sumantri, “Uji aktivitas antioksidan  ekstrak  etanolik  herba  alfalfa  ( Medicago sativa L.)  dengan  metode  DPPH  (1,1-difenil-2- pikrilhidrazil),” Jurnal Ilmu Farmasi dan Farmasi Klinik , vol. 11, no. 1, pp. 25-33, 2014.
[48] S. R. Jami’ah, M. Ifaya, J. Pusmarani, and E. Nurhikma, “Uji aktivitas antioksidan ekstrak metanol kulit pisang raja ( Musa Paradisiaca sapientum ) dengan metode DPPH
(2,2-Difenil-1-Pikrilhidrazil),” Jurnal Mandala
Pharmacon Indonesia , vol. 4, no. 1, pp. 33-38, 2018.
[49] G.  Rifai,  I.  W.  R.  Widarta,  and  K.  A.  Nocianitri, “Pengaruh  jenis  pelarut  dan  rasio  bahan  dengan

## Istiqomah, Polyphenol Extraction from Musa …
pelarut  terhadap  kandungan  senyawa  fenolik  dan aktivitas  antioksidan  ekstrak  biji  alpukat  ( Persea americana Mill .),” Jurnal ITEPA , vol. 7, no. 2, pp. 22-32, 2018.
[50] T. Saptari, Triastinurmiatiningsih, B. Lohita, and I. N.
Sayyidah,  “Kadar  fenolik  dan  aktivitas  antioksidan ekstrak  etanol  rumput  laut  coklat  ( Padina  australis ),” Fitofarmaka , vol. 9, no. 1, 2019.
[51] M.  R.  Marjoni,  Afrinaldi,  and  A.  D.  Novita,
“Kandungan  total  fenol  dan  aktivitas  antioksidan ekstrak air daun kersen ( Muntingia calabura L.),” Jurnal Kedokteran Yarsi 23 , vol. 23, no. 3, pp. 187-196, 2015.
[52] Q. W. Zhang, L. G. Lin, and W. C. Ye, “Techniques for extraction  and  isolation  of   natural  products:  A comprehensive  review,” Chinese  Medicine  (United Kingdom) , vol. 13, no. 1. BioMed Central Ltd., 17 April 2018.
[53] I.  A.  G.  Padmawati,  I.  K.  Suter,  and  N.  M.  I.  H. Arihantan,  “Pelarut  jenis  pelarut  terhadap  aktivitas antioksidan  ekstrak  eceng  padi,” Jurnal  Ilmu  dan Teknologi Pangan , vol. 9, no. 1, pp. 81-87, 2020.
[54] P. A. R. Yulis dan Y. Sari, “Aktivitas antioksidan dari limbah  kulit  pisang  muli  ( Musa  acuminata  Linn )  dan kulit  pisang  kepok  ( Musa  paradisiaca  formatypica ),” Al Kimia , vol. 8, no. 2, pp. 189-200, 2020.
[55] R.  A.  Yulianti,  W.  A.  Ningrum,  and  D.  B.  Pambudi,
“Uji  aktivitas  antioksidan  ekstrak  kulit  pisang  kapas ( Musa paradisiaca L.) dengan metode FRAP dan DPPH pada  sediaan hand  and  body  lotion ,” Media  Informasi Politekkes Kemenkes Tasikmalaya , vol. 17, no. 2, pp. 86- 92, 2021.
[56] A.  W.  Pratama,  S.  R.  Lestari,  A.  Gofur,  and  Y. Rakhmawati,  “Skrining  fitokimia,  total  fenol,  dan aktivitas antioksidan ekstrak metanol tangkai sisir buah pisang agung,” Jurnal Pangan dan Gizi , vol. 12, no. 2, pp. 14-21, 2022.
[57] N. Milićević et al. , “Kinetic modelling of  ultrasound- assisted  extraction  of   phenolics  from  cereal  brans,” Ultrason Sonochem , vol. 79, pp. 1-7, Nov 2021.
[58] I.  K.  W.  Putra,  G.  P.  G.  Putra,  and  L.  P.  Wrasiati, “Pengaruh  perbandingan  bahan  dengan  pelarut  dan waktu  maserasi  terhadap  ekstrak  kulit  biji  kakao ( Theobroma cacao L.) sebagai sumber antioksidan,” Jurnal Rekayasa dan Manajemen Agroindustri , vol. 8, no. 2, pp. 167-176, 2020.
[59] B.  L.  Sari,  Triastinurmiatiningsih,  and  T.  S.  Haryani,
“Optimasi  metode  Microwave  Assisted  Extraction (MAE) untuk menentukan kadar flavonoid total alga coklat  padina  australis,” ALCHEMY  Jurnal  Penelitian Kimia , vol. 16, no. 1, pp. 37-48, 2020.
[60] F.  U.  Romah,  A.  Rahmawati,  M.  F.  Rizkiana,  and  A. Susanti,  “Optimization  of   extraction  of   bioactive compound from pegagan leaves using ethanol solvent
with Microwave Assisted Extraction Method (MAE),” Journal of  Biobased Chemicals , vol. 2, pp. 43-55, 2022. [61] F. Rahmawaty and H. T. Sutanto, “Penerapan metode permukaan  respon  untuk  optimalisasi  proses sealing pada pengemasan produk makanan jelly,” Jurnal Ilmiah Matematika , vol. 3, no. 1, pp. 1-6, 2014.
[62] B.  Yingngam,  A.  Chiangsom,  and  A.  Brantner,
“Modeling  and  optimization  of   microwave-assisted extraction  of   pentacyclic  triterpenes  from  Centella asiatica  leaves  using  response  surface  methodology,” Ind Crops Prod , vol. 147, pp. 1-12, Mei 2020.
[63] L.  D.  English,  “STEM  education  K-12:  perspectives on integration,” Int J STEM Educ , vol. 3, no. 3, pp. 1- 8, Des 2016.
[64] T. Yılmaz and S. Tavman, “Modeling and optimization of   ultrasound  assisted  extraction  parameters  using response  surface  methodology  for  water  soluble polysaccharide extraction from hazelnut skin,” J Food Process Preserv , vol. 41, no. 2, pp. 1-13, Apr 2017.
[65] N.  L.  G.  D.  Yunita,  L. P. Wrasiati,  and  L.  Suhendra, “Karakteristik  senyawa  bioaktif   ekstrak  selada  laut ( Ulva  lactuca L.)  pada  konsentrasi  pelarut  etanol  dan lama  ekstraksi,” Jurnal  Rekayasa  dan  Manajemen Agroindustri , vol. 6, no. 3, pp. 189-195, 2018.
[66] I.  Fidrianny,  N.  A.  S.  Anggraeni,  and  M.  Insanu, “Antioxidant properties  of  peels  extracts  from  three varieties  of   banana  (Musa  sp.)  grown  in  West  Java- Indonesia,” Int  Food  Res  J ,  vol.  25,  no.  1,  pp.  57-64, 2018.
[67] A. K. Anal, S. Jaisanti, and A. Noomhorm, “Enhanced yield  of   phenolic  extracts  from  banana  peels  ( Musa Acuminata  Coll a  AAA)  and  cinnamon  barks ( Cinnamomum Varum ) and their antioxidative potentials in fish oil,” J Food Sci Technol , vol. 51, no. 10, pp. 2632- 2639, Okt 2014.
[68] S. Silva, E. M. Costa, C. Calhau, R. M. Morais, and M. E.  Pintado,  “Anthocyanin  extraction  from  plant tissues: A review,” Crit Rev Food Sci Nutr , vol. 57, no. 14, pp. 3072-3083, Sep 2017.
[69] B.  Yingngam,  M.  Monschein,  and  A.  Brantner, “Ultrasound-assisted extraction of phenolic compounds  from  Cratoxylum  formosum  ssp. formosum leaves using central composite design and evaluation  of   its  protective  ability  against  H 2 O 2 - induced cell death,” Asian Pac J Trop Med , vol. 7, no. S1, pp. S497–S505, Sep 2014.
[70] S.  Lushaini,  M.  A.  Wibowo,  and  P.  Ardiningsih, “Kandungan  total  fenol,  aktivitas  antioksidan,  dan sitotoksik  daun  kedadai  ( Ficus  variegata  Blume ),” JKK , vol. 4, no. 2, pp.. 1–5, 2015.