https://doi.org/10.46252/jsai-fpik-unipa.2022.Vol.6.No.2.234 e - ISSN 2550-0929

## Kinerja Kepadatan Spirulina Sp. yang diberi Salinitas Berbeda pada Media Kultur Walne
Performance Density of Spirulina Sp. Given Different Salinity on Walne Culture Media
Hasim 1* ,  Mohammad Akram 1 , Yuniarti Koniyo 1
1 Program Studi Akuakultur, Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, Universitas Negeri Gorontalo, Jl. Jenderal Sudirman nomor 6, Gorontalo 96211,Indonesia *Korespondensi:hasim@ung.ac.id,

## ABSTRAK
Salah  satu  permasalahan  dalam  pengembangan  budidaya  perikanan  adalah ketersediaan  pakan  alami  yang  memiliki  kandungan  gizi  yang  baik  seperti Spirulina sp. Salah  satu  upaya  mengembangkan  kultur Spirulina sp  ialah  melalui  manipulasi lingkungan misalnya  salinitas.  Oleh  karena  itu  tujuan  penelitian  ini  adalah menganalisis kinerja  kepadatan Spirulina sp  yang  diberi  salinitas  berbeda  dan  dikultur  pada  media walne.  Penelitian ini menggunakan metode percobaan desain Rancangan Acak Lengkap (RAL).  Selanjutnya  data  dianalisis  dengan  analisis  sidik  ragam.  Hasil  penelitian menunjukkan  puncak  kepadatan  populasi  tertinggi  yaitu  pada  hari  ke  tujuh.  Kinerja kepadatan tertinggi terjadi pada perlakuan 30 ppt sedangkan terendah pada perlakuan 20 ppt.    Dengan  demikian  dapat  disimpulkan  bahwa  salinitas  berpengaruh  terhadap  kinerja kepadatan Spirulina sp.  Hal  itu  diperkuat  oleh  analisis  sidik  ragam  pada  taraf  5%  yaitu F hitung > F tabel .
Kata Kunci : Kepadatan, Salinitas, Spirulina sp.

## ABSTRACT
One of the problems in the development of aquaculture is the availability of natural feed that has good nutritional content such as Spirulina sp. One of the efforts to develop Spirulina sp  culture  is  through  environmental  manipulation  such  as  salinity.  Therefore, the  purpose  of  this  study  was  to  analyze  the  density  performance  of Spirulina sp  given different salinity and cultured on Walne media. This study used an experimental method with  a  completely  randomized  design  (CRD).  Furthermore,  the  data  were  analyzed  by analysis of variance. Based on the research shows that the peak of the highest population density  is  on  the  seventh  day.  The  results  also  showed  that  the  highest  density performance  occurred  in  the  30  ppt  treatment  while  the  lowest  was  in  the  20  ppt treatment.  Thus  it  can  be  concluded  that  salinity  affects  the  density  performance  of Spirulina sp. This is confirmed by analysis of variance at the 5% level, namely Fcount > Ftable.
Keywords : Density, Salinity, Spirulina sp.
https://doi.org/10.46252/jsai-fpik-unipa.2022.Vol.6.No.2.234

## PENDAHULUAN
Pakan  alami  terus  mengalami perkembangan    sejalan  berkembangnya teknologi  dibidang  budidaya  perikanan. Pakan  alami  mempunyai  peran  strategis pada  usaha  budidaya  perikanan.  fungsi pakan  alami  sulit  disubstitusi  karena memiliki  sifat  daya  cerna  yang  baik, mudah  dikembang  biakan,  selain  itu mudah  didapatkan  di  alam,  sehingga bisa menekan biaya produksi Disamping itu  pakan  alami  memiliki  fungsi  yang sulit  disubstitusi.  Karena  memiliki  sifat daya cerna yang baik, mudah dikembang biakan,  mudah  didapatkan  di  alam, sehingga  bisa  menekan  biaya  produksi. Diantara  pakan  alami  yang  banyak digunakan  pada  kegiatan  budidaya  ikan dan udang ialah Spirulina sp. (Astiani et al., 2016).
Kultivasi Spirulina sp.  biasa dilakukan  mengunakan  air  laut,  air tawar,  maupun  air  payau.  Proses kultivasi  membutuhkan  media  kultur yang  tepat  dan  mengandung  nutrien yang  di  perlukan Spirulina sp.  Salah satu media yang dapat digunakan dalam proses  kultivasi Spirulina sp  yaitu  air laut,  hal  ini  dikarenakan  air  laut  adalah habitat  asli  mikroalga  ini  untuk  dapat berkembang  biak. Sprulina sp.  juga membutuhkan  nutrien  tambahan  baik makro  nutrien  atau  pun  mikro  nutrien untuk mendukung kelangsungan hidupnya. Mikro nutrien yang diperlukan Spirulina sp  yaitu  Fe,  Mn, Cu,  Zn,  B  dan  sianokobalamin  sebagai nutrisi  tambahan  serta  makro  nutrien antara lain N, P, C, H, O, Ca, Mg, dan K (Caturwati & Setyati, 2020).
Spirulina sp membutuhkan penanganan yang baik khususnya terkait pemenuhan  kebutuhan  unsur  nutrien yang  dibutuhkan  dalam  pertumbuhan demikian  halnya  dalam  media  kultur Spirulina  sp.  Keberadaan  nutrien  atau unsur  hara  akan  sangat  mempengaruhi kualitas  dan  kuantitas  produksi  sel Spirulina sp. Hal tersebut sejalan dengan pernyataan  (Sanchez  et  al.,  2003); (Christwardana  dan  Nur,  2013)  bahwa (1)  komposisi  bahan  nutrien  diperlukan
untuk  memperkaya  kandungan  nutrisi Spirulina  sp;  (2)      nutrien  yang  lengkap berpengaruh terhadap produksi biomassa Spirulina sp. Pemilihan pupuk komposisi  bahan  nutrien  dalam  media kultur  Spirulina  sp.  diperlukan  untuk memperkaya  kandungan  nutrisi,  selain untuk  menjaga  keseimbangan  gizi  yang dibutuhkan (Suminto, 2009)
Unsur  hara  atau  nutrien  dalam media  kultur  ini  sangat  penting  untuk menjaga kuantitas, kualitas, dan kestabilan  produksi  sel Spirulina sp. Pemilihan  pupuk  komposisi  bahan nutrien dalam media kultur Spirulina sp. diperlukan untuk memperkaya kandungan nutrisi, selain untuk menjaga keseimbangan tersebut (Suminto, 2009). Menurut  (Christwardana  &  Nur,  2013) bahwa  (1)  komposisi  bahan  nutrien diperlukan untuk memperkaya kandungan  nutrisi Spirulina sp;  (2) nutrien yang lengkap berpengaruh terhadap    produksi  biomassa Spirulina sp. Jenis  pupuk  yang  banyak  dipilih masyarakat  dalam  kultur Spirulina sp . adalah  jenis  PA  ( Pro  Analisis )  yang sudah distandarkan seperti pupuk Walne.  Menurut  (Widianingsih  et  al., 2008)  media  walne  yaitu  media  kultur yang  baik  bagi Spirulina sp.  karena media  walne  mengandung  komposisi nutrien  yang  lengkap  yaitu  terdiri  atas unsur makro dan mikro jika dibandingkan dengan media lain.
Salah  satu  faktor  pembatas  yang berpengaruh  langsung  terhadap  tekanan osmotik  organisme  air  ialah  salinitas. Karena  itu  organisme  air  memiliki mekanisme  osmoregulasi.  Kebanyakan phytoplankton  termasuk Spirulina sp.
memiliki  kemampuan  beradaptasi  yang baik terhadap salinitas sehingga digolongkan sebagai euryhalin. Salinitas berpegaruh  terhadap  kadar  protein  yang dkandung Spirulina sp.  Pada  salinitas yang  rendah  akan  menghasilkan  protein yang  lebih  tinggi  atau  dengan  kata  lain kadar  protein  akan  meningkat  apabila salinitas  di  turunkan  (Ravelonandro  et al., 2011).
https://doi.org/10.46252/jsai-fpik-unipa.2022.Vol.6.No.2.234 e - ISSN 2550-0929
Menurut Robi (2014), pada umumnya  alga  memiliki  respon  sangat peka  terhadap  perubahan  salinitas. Salinitas  pada  media  budidaya  potensial mempengaruhi proses fotosintesis, selain  itu  menurunnya  nilai  salinitas pada media budidaya dapat menyebabkan  air  dan  ion-ion  yang terlarut  masuk  ke  dalam  sitoplasma  sel dan  mengubah  pH  sitoplasma  sel.
Perubahan  tersebut  akan  berdampak terhadap  penurunan  kerja  enzim  yang berperan  sebagai  biokatalisator.  Riset terkait Spirulina telah banyak dilakukan. Salah satunya adalah pemanfaatan tauge kacang  hijau  sebagai  pupuk  bagi pertumbuhan Spirulina sp.    (Robi,
2014).  Riset  ini  bertujuan  mendapatkan kindisi salinitas optimal bagi pertumbuhan spirulina.

## METODE PENELITIAN
Penelitian ini menggunakan metode  eksperimen  (percobaan)  dengan rancangan  acak  lengkap  (RAL)  yang terdiri  atas  4  perlakuan  dan  3  kali pengulangan. Dengan penggunaan salinitas  yang  berbeda  yaitu  25  ppt,  30 ppt, 35 ppt dan kontrol 20 ppt.

## Waktu dan Tempat Penelitian
Penelitian ini dilaksanakan selama  1  bulan,  yaitu  bulan  Februari  - Maret  2019  bertempat  di  Laboratorium Pakan  Alami  Balai  Besar  Perikanan Budidaya  Air  Payau  (BBPBAP)  Jepara, Jalan Cik Lanang Desa Bulu, Kecamatan  Jepara,  Kabupaten  Jepara,
Propinsi Jawa Tengah.

## Alat dan Bahan
Alat  yang  digunakan  dalam penelitian  yaitu toples,  lampu  tl,  lux meter,  aerator,  pipa  plastik, handy  tally counter , mikroskop, thermometer,
refraktosalinometer,  pH  meter,  DO meter,  sedgewick  rafler,  corong  gelas, pipet  tetes,  kertas  saring  whatman  no. 40, timbangan analitik, magnetic stirrer , hotplate,  label,  alat  tulis,  jas  lab,  spidol permanen,  kamera,  aluminium  foil,
gelas  ukur  10  ml,  gelas  ukur  25  ml, autoclave dan wadah erlenmeyer. Adapun  bahan  yang  digunakan  yaitu bibit Spirulina sp,  air  laut,  air  tawar, thiosulfate,  okcalite,  clorine,  pupuk walne, aquades dan vitamin B12.

## Sterilisasi alat dan bahan
Sterilisasi bertujuan untuk mengurangi adanya gangguan organisme  yang  tidak  dikehendaki (kontaminan), sehingga tidak mengalami kerusakan  yang  dapat  mempengaruhi proses  inokulan  (Dewi  et  al.,  2017). Pada penelitian ini menggunakan beberapa  cara  untuk  mensterilkan  alat yaitu menggunakan autoclave dan pencucian  menggunakan  sabun  dan  air bersih. Adapun beberapa  peralatan yang perlu disterilkan seperti wadah
erlenmeyer,  selang  aerasi,  batu  aerasi, pipet.
Media  air  laut  yang  digunakan untuk  kultur  terlebih  dahulu  disterilkan menggunakan  clorine  60  ppm  selama  ± 24  jam.  Kemudian  pada  media  tersebut dipasang  aerasi  serta  menambahkan thiosulfat  20  ppm.  Air  laut  yang  sudah steril dapat disimpan dalam wadah yang tidak tembus cahaya dan dalam keadaan tertutup.  Alat  kultur  yang  terbuat  dari bahan  kaca  dicuci  terlebih  dahulu hingga bersih kemudian dibilas menggunakan air tawar lalu dikeringkan. Untuk peralatan yang tidak tahan  panas  harus  ditutup  dengan  kapas dan kasa, selajutnya dibungkus menggunakan  alumunium  foil  dan disterilkan menggunakan autoclave pada suhu 121˚C selama 15 menit.

## Persiapan alat prasarana kultur
Alat  yang  digunakan  untuk  kultur Spirulina sp  ialah  toples  bervolume 2000  ml  dibersihkan  terlebih  dahulu menggunakan sabun dan (kain),
kemudian  dibilas  dengan  air  tawar  dan dikeringkan.  Media  yang  digunakan untuk  pemeliharaan Spirulina sp  dalam penelitian  ini  yaitu  air  laut  yang diperoleh  dari  bak  tendon  yang  sudah mengalami  proses  filtrasi,  selanjutnya
https://doi.org/10.46252/jsai-fpik-unipa.2022.Vol.6.No.2.234
menyediakan  12  wadah  yang  sudah bersih  dan  diberi  tanda  batas  volume yang sesuai dengan perlakuan yang akan digunakan  pada  penelitian  yakni  A,  B, C,  dan  control  dengan  masing-masing ulangan  sebanyak  tiga  kali  kemudian diberi label dengan menggunakan kertas label.  Untuk  pengaturan  pencahayaan digunakan  lampu  TL  40  watt  yang penempatannya diatur pada ruang kultur.  Agar Spirulina sp  mendapatkan cahaya  untuk  menunjang  pertumbuhan Spirulina sp.

## Persiapan media budidaya
Pada bagian ini air media dipertahankan  sesuai  dengan  perlakuan yang  telah  ditentukan.  Disamping  itu perlakuan penurunan salinitas dan
sebaliknya  untuk  menaikan  salinitas didasarkan  atas  formulasi  yang  baku.
Pengenceran salinitas (menurunkan salinitas)  dengan  formulasi  merujuk pada  (Rahim  et  al.,  2015)  sebagai berikut:

## 𝑽𝟏 = 𝑽𝟏 (𝑺𝟏 − 𝑺𝒏)
𝑺𝒏 + 𝑺𝟐
Keterangan : Sn = salinitas yang diinginkan
S1 = salinitas air laut (ppt) S2 = salinitas air tawar (ppt)
V1 = volume air laut (ml)
Untuk menaikkan salinitas digunakan persaman sebagai berikut: 𝑺 = (𝑺𝒏 − 𝑺𝟏) × 𝑽
Keterangan : S = garam (gr) S n = salinitas yang diinginkan (ppt) S 1 = salinitas awal (ppt)
V = volume air laut (liter) ppt= gram/liter
Perhitungan  jumlah  awal  inokulan (bibit Spirulina sp)
Pengamatan Spirulina sp menggunakan  alat  bantu Sedgewick
Rafter .  Kemudian  hasil  cacah  tersebut digunakan  untuk  menghitung  kepadatan
Spirulina sp  dengan  menggunakan rumus berikut (Bangun et al., 2015);
𝑵 = 𝟏𝟎𝟎𝟎 𝟑, 𝟏𝟒  × ( 𝒅 𝟐) 𝟐 × 𝒑 × 𝒏
Keterangan : N = kepadatan Spirulina sp (unit/ml) N  =jumlah Spirulina sp  per  bidang pandang
p = jumlah lapang pandang d = diameter bidang pandang (mm)
Untuk  memasukkan  bibit  yang akan  dikultur,  menggunakan  rumus berikut (Bangun et al., 2015)
𝑽𝟏 = 𝑽𝟐 × 𝑵𝟐

## 𝑵𝟏
Keterangan :
V1 = volume bibit untuk penebaran awal (ml) N1 = kepadatan bibit/ stock Spirulina sp (unit/ml) V2  =  volume  media  kultur  yang dikehendaki (L) N2=  kepadatan bibit Spirulina sp yang dikehendaki (unit/ml) Kultur Spirulina sp.

## Kultur Spirulina sp
Pembuatan  kultur Spirulina sp dilakukan  dengan    menyiapkan  wadah toples  2000  ml,  kemudian  memasukkan air  laut  yang  salinitas  yang  sduah ditentukan  yaitu  25  ppt,  30  ppt,  35  ppt, dan kontrol 20 ppt. Selanjutnya menambahkan  pupuk  walne  sebanyak  2 ml  dan  vitamin  B12  1  ml  pada  masing- masing  wadah  yang  berjumlah  12  buah. Setiap perlakuan yang diberikan
Spirulina sp  dikultur  dengan  kepadatan awal 10.000 sel/ml.

## Pengamatan  pertumbuhan  Spirulina sp
Pengambilan  sampel  pada  setiap perlakuan  diambil  menggunakan  pipet tetes, kemudian sampel diawetkan menggunakan alkohol, selanjutnya diencerkan 10 kali atau setara dengan 10 ml. Pengenceran dapat dilakukan
https://doi.org/10.46252/jsai-fpik-unipa.2022.Vol.6.No.2.234 e - ISSN 2550-0929
dengan menggunakan aquadest sebanyak  9  ml  dan  mengambil  sampel perlakuan  sebanyak  1  ml.  Perhitungan sel dilakukan dengan bantuan sedgewick rafter kemudian diamati dibawah
mikroskop  dengan  pembesaran  100  kali dan  dihitung  menggunakan handtally counter
Perhitungan Spirullina sp. mengacu pada (Suminto, 2009)  dengan formulasi sebagai berikut;

## 𝑁 = 𝐶 × 1000 𝐴𝑋𝐷𝑋𝐹
Keterangan :
C = Jumlah organisme yang terhitung D = Kedalaman lapang pandang (1 mm) A = Luas lapang pandang (π r2 = 3,14 x
1 mm2)
F = Jumlah lapang pandang

## Variabel yang Diamati
Kepadatan Spirulina Sp Variabel yang diamati pada penelitian  ini  terdiri  dari  dua  yaitu penghitungan  jumlah  awal  inokulan untuk  memasukkan  bibit  yang  akan dikultur dan perthitungan jumlah kepadatan spirullina sp.Jumlah  kotak dalam Sedgewick  Rafter  Counting  cell (SRCC)  adalah  1000  kotak,  sehingga untuk memudahkan penghitungan
dilakukan  metode  pengambilan  10  titik sampel secara acak.

## Kualitas Air
Pengukuran  parameter  kualitas  air yang  akan  diamati  yaitu  salinitas,  suhu, dan  pH  dan  Do.  Hasil  pengukuran kualitas  air  kemudian  dianalisis  secara deskriptif.

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Perubahan  Fisik  Harian  pada  Kultur Spirulina sp
Kultur Spirulina sp  mengalami perubahan  fisik  secara  kasat  mata selama masa pertumbuhan dan perkembangan selama 10 hari pemeliharaan.  Perubahan  fisik  yang terjadi  adalah  perubahan  warna  pada masing-masing  perlakuan  pada  saat penelitian. Perubahan warna awal penebaran atau hari ke-0 yakni berwarna hijau  bening  atau  dapat  di  artikan sebagai  fase  lag  (awal)  hingga  hijau pekat pada fase ekponensial dan kembali ke  warna  hijau  kekuningan  pada  fase deklinasi  atau  fase  kematian.  Hal  ini sesuai  dengan  pendapat  (Caturwati  dan Setyati, 2020) bahwa dalam adaptasi sel mikroalga  telah  memanfaatkan  nutrien yang  ada  dalam  media  meskipun  belum terlalu optimal.
Perubahan  warna  tersebut  memiliki batas  waktu  yang  sesuai  dengan  lama pemeliharaan Spirulina sp.  Peningkatan pertumbuhan Spirulina sp.  di  tandai dengan  dengan  warna  hijau  kebiruan pada  media  kultur,  sedangkan  warna kekuningan pada media kultur menunjukan  bahwa Spirulina sp,  telah mengalami  fase  kematian  (Muyassaroh et  al.,  2018).  Lama  pemeliharaan  yang dilakukan yaitu 10 hari dimana pada hari ke-0  sampai  hari  ke-6  perubahan  warna sudah mulai nampak dan pada hari ke-7 sampai  dengan  hari  ke-10  mengalami perubahan  warna  yang  lebih  jelas  dari warna  hijau  mulai  berubah  menjadi hijau kekuningan (Gambar 1).
(a) (b) (c) Gambar 1 . Perubahan Fisik Spirulina sp
https://doi.org/10.46252/jsai-fpik-unipa.2022.Vol.6.No.2.234

## Tingkat Kepadatan Spirulina sp
Hasil pengamatan penelitian berupa tingkat  kepadatan  dan  pertumbuhan Spirulina sp. digunakan untuk mengetahui  pengaruh  salinitas  berbeda terhadap laju pertumbuhan dan kandungan  gizi Spirulina sp  yang  di kultur  pada  media  walne  dan  lama pemeliharaan  selama  10  hari  dengan pemgambilan  sampel  setiap  24  jam sekali  pada  pukul  09:00  WIB.  hasil analisis  data  terhadap  pertumbuhan  dan tingkat kepadatan biomassa Spirulina sp yang  telah  dilakukan,  memperoleh jumlah  pertumbuhan  biomassa  yang menunjukan bahwa dalam setiap perlakukan menujukan hasil yang berbeda.  Disini  dapat  dilihat  pada  tabel diatas  bahwa  pada  salinitas  30  ‰ merupakan puncak tertingi dari
pertumbuhan
Spirulina sp yaitu 6071889,597  sel/ml,  di  ikuti  oleh salinitas  25  ‰  yaitu  5437813,163 sel/ml,  kemudian  perlakuan  salinitas  35 ‰  yaitu 4298322,718 sel/ml, dan yang terendah pada perlakuan salinitas 20  ‰ yakni 4187919,321 sel/ml. Pada Gambar 2 terlihat perlakuan yang sangat menonjol pertumbuhan kepadatanya adalah salinitas 30 ‰.  Tingkat pertumbuhan  dilihat  dari  hari  pertama penyamplingan  sampai  dengan  hari  ke 10,  menunjukkan  perumbuhan  tertinggi pada  hari  ke  6  sebanyak  1056157,113 sel/mil, di ikuti pada hari ke 5 sebanyak 637579,618  sel/mil,  kemudian  di  ikuti oleh  hari  ke  4,3,2,1  dan  hari  ke  0  yaitu sebanyak 10000 sel/mil.
Tingkat pertumbuhan dan kepadatan Spirulina sp  pada  tingkat salinitas  yang  berbeda  selama  10  hari penyamplingan  disajikan  dalam  bentuk Gambar 2.
Hari  ke  0  penebaran  awal  bibit Spirulina sp yang di ambil langsung dari kultur  murni  Labolatorium  BBPBAP Jepara  sebanyak  10000  sel/mil  pada setiap perlakuan dengan salinitas berbeda dan ditambahkan dengan pupuk walne dan vitamin untuk mengakselerasi pertumbuhan. Penebaran awal pada  fase lag  atau  fase  dimana  Spirulina  sp
beradaptasi dengan lingkungan barunya. Pada  ini  Spirulina  sp  tidak  mengalami perubahan  atau  penambahan  jumlah populasi  di  kategorikan  masih  tetap sama.  Lama  adaptasi  mikroalga  di pengaruhi  beberapa  faktor  di  antaranya adalah  media  dan  jumlah  inokulannya. Proses fotosintesis masih tetap aktif dan organisme mengalami metabolisme tetapi  tidak  terjadi  pembelahan  sel sehingga kepadatan awal dari mikroalga tidak mengalami peningkatan.
Gambar 2. Pertumbuhan Kepadatan Spirulina sp
Hari  ke-1  pemeliharaan Spirulina dari  ke  empat  perlakuan  masih  dalam taraf yang sama atau belum menunjukan ada  peningkatan  yang  signifikan    dalam artian  jumlah  dari  populasi  masih  sama. Pada  hari  ke-2,  pada  perlakuan  salinitas 25 ppt. mengalami peningkatan dibanding ke-3 perlakuan lainnya. dan di ikuti  oleh  salinitas  20  ppt.  dan selanjutnya di susul oleh salinitas 30 dan 35  ppt.  Pada  fase  ini  mikroalga  mulai mengalami pembelahan sel dan berfotosintesis  dengan  memanfaatkan cahaya  dari  lampu  untuk  mendapatkan energi.  Hari  ke-3  peningkatan  semakin terlihat , pada  fase ini masuk dalam fase ekponensial dimana mikroalga membelah  dengan  cepat  terlihat  pada grafik  pada  perlakuan  salinitas  25  ppt meningkat  dari  hari    sebelumnya  dan  di ikuti  oleh  salinitas  30  ppt  dan  salinitas 20 ppt dan 25 ppt pada taraf yang sama.
Pada hari ke-4 pertumbuhan Spirulina sp  semakin  meningkat  hal  ini di  dukung  oleh  beberapa  faktor  seperti lingkungan,  media,  penambahan  pupuk walne dan vitamin sehingga pembelahan secara  individu  semakin  lama  semakin
https://doi.org/10.46252/jsai-fpik-unipa.2022.Vol.6.No.2.234 e - ISSN 2550-0929
cepat.  Pada  hari  ke-4  ini  terlihat perubahan  posisi  tertinggi  dari  4 perlakuan  dimana  salinitas  30  ppt melonjak  dari  salinitas  25  ppt  dan  di ikuti  oleh  salinitas  20  ppt  dan  35  ppt. Pada  fase  ini  terlihat  perlakuan  pada salinitas  20  ppt  dan  35  ppt  masih terbilang  rendah  namun  pertumbuhanya masih dalam fase ekponensial. Hari ke-5 salinitas  20,30  dan  35  ppt  mengalami penurunan  dari  salinitas  25  ppt  yang sudah  mengalami  puncak  peningkatan kepadatan Spirulina sp.  Salinitas  25  ppt mengalami  fase  eksponensial  dimana meningkatnya aktivitas fotosintetik yang menghasilkan biomasa yang tinggi. Pada hari  ke-6  menunjukkan  hasil  yang berbanding terbalik dari hari sebelumnya  dimana  peningkatan  jumlah kepadatan Spirulina sp. pada salinitas 30 ppt meningkat drastis dari hari sebelumnya, sedangkan   pada perlakuan salinitas  25  ppt  mulai  mengalami penurunan  atau  mulai  masuk  pada  fase stasioner dimana pertumbuhan mikroalga  akan  terhenti  yang  ditandai dengan keseimbangan antara laju pertumbuhan  dan  kematian  karena keterbatasan nutrien dalam  media.
Penurunan  juga  mulai  terjadi  pada salinitas 20 ppt dan 35 ppt pada fase ini tidak  terjadi  pembelahan  sel Spirulina sp.  Hal  ini  menunjukkan  bahwa  respon fisiologis Spirulina  sp pada  salinitas  30 ppt  lebih  optimal  dibandingkan  pada konsentrasi lainnya. Pada  hari  ke-7  sampai  dengan  hari ke-10  masuk  pada  tahap  penurunan jumlah populasi dimana semua perlakuan mengalami proses fase stasioner.  Penurunan  dari  hari  ke  hari mulai  terlihat  hingga  hari  ke-10  hingga semua  perlakuan  pada  salinitas  berbeda mengalami  kematian,  dan  juga  terjadi perubahan  warna  pada  semua  media yang  digunakan.  Warna  yang  paling mencolok  terjadi  fase  deklinasi  yaitu pada salinitas 35 ppt dan salinitas 20 ppt berwarna  hijau  ke  kuning-kuningan menandakan bahwa tidak ada lagi proses pertumbuhan (referensi). Berdasarkan hasil penelitian penggunaan salinitas berbeda dan
penambahan  pupuk  walne  serta  vitamin menunjukan bahwa pertumbuhan Spirulina sp mengalami 4 fase
pertumbuhan  yaitu    fase  adaptasi  (Lag), fase  eksponensial,  fase  stasioner,  dan fase  deklinasi  atau  fase  kematian.  Fase lag  pada  masing-masing  perlakuan terjadi  pada  saat  penambahan  inokulan di  tambahkan  pada  media  kultur.  Fase lag atau fase adaptasi memiliki pertumbuhan  sel  yang  lebih  cepat  jika sel  yang  diinokulasi  berasal  dari  fase eksponensial.    Hal  ini  didukung  oleh pendapat (Muliani et al., 2018) menyatakan bahwa media kultur, jumlah dan umur inokulan berpengaruh terhadap lamanya fase lag.
Tahap  eksponensial  terjadi  sejak hari  ke  dua  sampai  hari  ke  enam  pada perlakuan  A,  B,  C,  dan  D  selama pengamatan.    Tahapan  ekponensial ditunjukkan  oleh  pertumbuhan  populasi atau kepadatan yang tinggi secara cepat. Pada fase eksponensial diduga perlakuan A,  B,  C,  dan  D  media  kultur mengandung unsur nutrien sesuai
kebutuhan Spirulina sp  sehingga mendukung  proses  berkembang  biak melalui  pembelahan  sel.  Unsur  hara yang  terkandung  didalam  pupuk  walne dan  ditambah  dengan  vitamin  dapat menunjang  percepatan  pembelahan  sel mikroalga. Nitrogen dan pospor merupakan  unsur  hara  yang  berperan penting  dalam  proses  fotosintesis.  Hal ini  sesuai  dengan  pendapat  (Muliani  et al.,  (2018)  menyatakan  bahwa  sel inokulan  pada  fase  eksponensial  sudah memanfaatkan  kandungan  nutrisi  dalam media  pemeliharaan  terutama  nitrogen dan pospor untuk partumbuhan Spirulina dan bereproduksi lebih banyak lagi,  selain  itu  unsur  N  dan  P  dalam media  kultur  merupakan  hal  penting dalam  proses  fotosintesis,  hasil  dari fotosintesis  berupa  glukosa  dan  energi akan  digunakan  dalam  metabolisme  sel sehingga  pertumbuhan  dan  pembelahan sel Spirulina sp mengalami peningkatan. Fase  eksponensial  terjadi  pada waktu yang berbeda dan perlakuan yang berbeda dimana pada perlakuan salinitas 25  ppt  puncaknya  terjadi  pada  hari  ke-5
https://doi.org/10.46252/jsai-fpik-unipa.2022.Vol.6.No.2.234
sedangkan  pada  salinitas  30  ppt  fase logaritmiknya  terjadi  pada  hari  ke-6 dengan  tingkat  kepadatan  sel  tertinggi dari semua perlakuan yaitu 1056157,113 sel/ml.  Hal  ini  berarti  pada  salinitas  25 ppt  tingkat  pemanfaatan  nutrien  yang terkandung  dalam  media  pemeliharaan lebih  cepat  karena  kandungan  garam yang  rendah  sehingga  proses  difusi  dari media  kultur  ke  dalam  sel Spirulina sp dapat  berlangsung  lebih  cepat  karena tekanan osmosisnya kecil.
Berbeda  pada  salinitas  30  ppt  fase logaritmiknya  terjadi  pada  hari  ke-6 dikarenakan  energi  yang  diperoleh  dari nutrisi  yang  diserap  terbagi  untuk pertumbuhan  dan  untuk  upaya  adaptasi dengan lingkungan yang kadar garamnya lebih tinggi. Salinitas merupakan  salah  satu  faktor  pembatas pertumbuhan dan perkembangan fitoplankton.  Perubahan  salinitas  secara langsung menyebabkan perubahan tekanan osmosis di dalam sel fitoplankton sehingga aktifitas sel menjadi terganggu (Padang, 2013). Pemanfaatan nutrien tergolong
lambat  sehingga  pertumbuhan  dan pembelahan  sel  tidak  terlalu  maksimal, namun  pada  hari  ke-6  perlakuan salinitas  30  ppt  mencapai  puncaknya dengan jumlah sel terbanyak di bandingkan  dengan  perlakuan  lainya.
Menurut (Padang, 2013), salinitas 30 ppt mempunyai  kandungan  garam  yang banyak sehingga tekanan osmosis menjadi  lebih  besar  yang  menyebabkan proses  difusi/penyerapan  nutrisi  terjadi lebih  lambat  dan  mengakibatkan  waktu untuk  mencapai  kepadatan  maksimum lebih lama.
Fase stasioner pada perlakuan A, B, C dan D terjadi setelah fase eksponensial,  dilihat  dari  gambar  2 penurunan  terjadi  pada  hari  ke-7.  Fase stasioner ditandai dengan laju pertumbuhan  dan  kematian  yang  relativ sama. Pada fase ini penurunan kelimpahan mulai Nampak dibandingkan  dengan  fase  eksponensial, penurunan kelimpahan ini terjadi seiring dengan  unsur  hara  yang  terkandung didalam  dimanfaatkan   secara maksimal oleh Spirulina sp untuk pertumbuhannya.  Hal  ini  sesuai  dengan pendapat  dari    Caturwati  (2019)  yang menyatakan bahwa fase stasioner merupakan  fase  dengan  pertumbuhan dan  perkembangan  dari Spirulina sp yang  mulai  mengalami  penurunan  di bandingkan  dengan  fase  eksponensial, pada  fase  ini  laju  reproduksi  sel  sama dengan  laju  kematian  dalam  artian penambahan dan pengurangan fitoplankton relatif sama sehingga kepadatan mikroalga cenderung sama.
Fase  kematian  (Deklinasi)  pada perlakuan  A,  B,  C  dan  D  terjadi  pada hari  ke-10  yang  di  tandai  dengan menurunya  jumlah  kepadatan  yang  di hasilkan Spirulina sp.  Menurunnya kelimpahan  sel  di  akibatkan  oleh padatnya  sel Spirulina sp  sehingga terjadi  persaingan  untuk  pemanfaatan nutrien  yang  terkandung  dalam  media pemeliharaan.  Hal  ini  sejalan  dengan pernyataan  (Utomo  et  al.,  2005)  bahwa meningkatnya jumlah kematian disebabkan  oleh  penurunan  jumlah nutrien  pada  tingkat  yang  tidak  mampu lagi untuk menunjang berlajutnya pertumbuhan  dan  terbentuknya  buangan metabolic  yang  melampaui  tingkat toleransi. Menurut  (Buwono  &  Nurhasan, 2018)  pemanenan  mikroalga  dapat dilakukan berdasarkan pola pertumbuhan  mikroalga  dan  harus  pada saat  puncak  populasi.  Pemanenan  yang terlampau  cepat  atau  belum  mencapai puncak  populasi,  akan  mengakibatkan sisa  zat  hara  masih  cukup  banyak sehingga dapat membahayakan organisme. Pada saat penelitian pemanenan dilakukan pada saat
Spirulina mengalami  fase  penurunan atau  pada  akhir  penelitian,  sehingga Spirulina yang  di  hasilkan  pada  saat pemanenan  mengalami  kematian  dan kualitasnya  menurun.  Hasil  berat  basah yang  didapatkan  pada  penelitian  yaitu pada  salinitas  25  ppt  berat  basa  yang dihasilkan  3,33  gram,  salinitas  30  ppt 4,67  gram,  salinitas  35  ppt  2  gram  dan salinitas 20 ppt yaitu 2.33 gram.
https://doi.org/10.46252/jsai-fpik-unipa.2022.Vol.6.No.2.234 e - ISSN 2550-0929
Hasil analisis sidik ragam menunjukan bahwa salinitas yang berbeda  dengan  penambahan  pupuk walne  serta  vitamin  berpengaruh  nyata terhadap  laju  pertumbuhan Spirulina sp dengan  nilai  F hitung =  6,070  lebih  besar dari pada F tabel = 4,07 (Tabel 1). Hasil uji BNT  menunjukan  bahwa  ada  perbedaan nilai dari setiap perlakuan seperti terlihat pada Tabel 2.
Hasil  uji  lanjut  BNT  terhadap  nilai rata-rata  pertumbuhan  dan  kepadatan Spirulina sp menunjukan bahwa
perlakuan  B  (salinitas  30  ‰)  berbeda nyata  lebih  tinggi  dari  perlakuan  A,  C, dan  D.  Perlakuan  C  mendapatkan  nilai rata-rata    paling  rendah  dari  semua perlakuan,  namun  tidak  berbeda  nyata terhadap  perlakuan  D.  Penambahan pupuk  walne  dan  vitamin  B12  pada media  kultur  dan    salinitas  yang  sesuai dengan  batas  optimal  pertumbuhan Spirulina sp  menyebabkan  Perlakuan  B
mendapatkan hasil yang lebih tinggi dari semua  perlakuan.  Oleh  karena  itu
pengunaan  pupuk  yang  sesuai  dengan kebutuhan Spirulina sp dapat meningkatkan biomassa sel. Kualitas Air Faktor penting yang sangat berpengaruh terhadap pertumbuhan
Spirulina sp  selama  kultur  adalah kualitas  air  meliputi  kondisi  fisik  dan kimia  dari  medianya.  Kondisi  fisika meliputi  suhu  dan  intensitas  cahaya sedangkan kondisi kimia meliputi salinitas,  pH,  kadar  oksigen  terlarut, nitrat  dan  fospat    (Yusuf  et  al.,  2012).
Parameter  kualitas  air  yang  di  ukur sebagai faktor pendukung selama pelaksanaan  berlangsung  antara  lain, suhu,  intensitas  cahaya,  salinitas,  pH,
DO, nitrat dan fospat. Kisaran pengukuran  kualitas  air  selama  kegiatan penelitian dan optimum bagi pertumbuhan dan kepadatan Spirulina sp dapat dilihat pada Tabel 3.
Tabel 1. Daftar Analisis Ragam Hasil Kepadatan Spirulina sp Sumber Keragaman Derajat Bebas Jumlah Kuadrat Kuadrat Tengah F Hitung F Tabel 5% Perlakuan 3 400048244012.604   133349414670.868   6.070 4.070 Galat 8 175754797354.862 21969349669.358 Total 11 575803041367.466 Tabel 2. Hasil Uji Lanjut BNT
Perlakukan Rata-rata Perlakuan Rata-rata Perlakuan + BNT Simbol C 601804.67 7629291948 a D 617303.61 7784281328 ab A 739808.92 9009334408 bc B 1056157.11 1217281637 d Tabel 3 . Kualitas Air Perlakuan Parameter Salinitas (ppt) Suhu (°C) pH DO A 25 22.72 7.78 7.4 B 30 23.12 7.92 7.34 C 35 23.1 7.94 7.36 D 20 23.12 7.89 7.33
https://doi.org/10.46252/jsai-fpik-unipa.2022.Vol.6.No.2.234
Hasil pengukuran suhu yang dilaksanakan selama penelitian  berkisar 23  -  24 o C.  Menurut  (Buwono  & Nurhasan,  2018) Spirulina sp  memiliki pertumbuhan  maksimal  pada  kisaran suhu  20-30 o C.  Dengan  demikian  suhu selama  penelitian  berada  pada  interval optimal. Disamping itu suhu pada ruang riset  dalam  kondisi  terkontrol,  sehingga relatif seragam. Nilai  suhu yang didapatkan  selama  penelitian Spirulina sp, skala laboratorium cenderung konstan  pada  suhu  23 o C  karena  di pengaruhi  oleh  suhu  ruangan  yang menggunakan pendingin ruangan.
Salah  satu  faktor  penting  dalam budidaya Spirulina  sp ialah  sinar matahari karena sinar matahari merupakan sumber utama bagi organisme  aututrop  termasuk Spirulina sp  dalam  proses  fotosintesis.  Apabila dalam suatu perairan kekurangan cahaya maka proses fotosintesis tidak berlangsung  normal  sehingga  akan mempengaruhi  kepadatan  sel  yang  akan dihasilkan.  (Kusdarwati  et  al.,  2011) menyatakan bahwa sinar matahari merupakan  sumber  energi  utama  dalam proses fotosintesis. Hal ini menunjukkan bahwa    intensitas,  kualitas  dan  periode penyinaran  merupakan  faktor  yang sangat  penting  diperhatikan  dalam budidaya ,,,
Sumber  cahaya  yang  digunakan pada  penelitian  ini  adalah  cahaya  yang didapatkan  dari  lampu  lampu  putih  40 watt,  dengan  intensitas  cahaya  selama penelitian  berkisar  2400  lux.  Intensitas cahaya yang optimal untuk pertumbuhan Spirulina sp  berkisar  antara  150-3000 lux  dan  tidak  melebihi  4000  lux  untuk menghindari  fotoinhibisi.  Fotoinhibisi merupakan  pemaparan  cahaya  berlebih yang  ditangkap  oleh  klorofil  sehingga terjadi penurunan
kemampuan fotosintesis  pada  klorofil  (Richmond, 2004).
Nilai  pH  yang  di  peroleh  selama penelitian berkisar 7,33 – 7,94. Nilai pH merupakan  faktor  yang  penting  bagi pertumbuhan Spirulina sp.  Nilai  pH pada  media  tumbuh  mikroalga  akan menentukan
kemampuan biologi
mikroalga  dalam  memanfaatkan  unsur hara.  pH  optimum  dalam  pertumbuhan Spirulina sp.  yaitu  berkisar  antara  7,5- 9,5.  Perairan  di  alam  dengan  pH  5-9,5 merupakan  perairan  yang  cocok  untuk pertumbuhan Spirulina sp (Putri, 2019) Hasil  pengukuran  oksigen  terlarut (DO)  dalam  kultur Spirulina selama penenelitian adalah 7,36 mg/l. Persentasi hasil  pengukuran  oksigen  terlarut  (DO) yang  di  dapatkan  tergolong  tinggi. Menurut (Muliani et al., 2018) kadar O 2 terlarut  3,0  –  5,0  mg/l  kurang  produktif dan  di  atas  7  ppm  produktivitasnya sangat  tinggi.  Peningkatan  kandungan oksigen  terlarut  dalam  media  kultur Spirulina sp  disebabkan  adanya  suplai oksigen yang besar dari proses fotosintesis dan aerasi.
Salinitas  adalah  salah  satu  faktor utama  yang  mempengaruhi  biota  dalam mempertahankan  keseimbangan  tekanan osmotik  dalam  air  sebagai  lingkungan hidupnya.  Pada  umumnya  mikroalga termasuk Spirulina sp.  mempunyai toleransi  yang  cukup  besar  terhadap perubahan  salinitas.  Perlakuan  yang dijalankan  selama  penelitian  masih dalam batas salinitas yang normal untuk perumbuhan Spirulina sp.  Menurut
(Robi,  2014)  kebanyakan  alga  sangat peka pada perubahan salinitas, selanjutnya salinitas juga dapat mempengaruhi  proses  fotosintesis  pada media kultur.
Variasi  kadar  salinitas  air,  mulai dari  salinias  air  tawar  sampai  pada salinitas  air  laut  adalah  0-35  ppt. Spirulina sp.  dapat  tumbuh  baik  pada salinitas 15-20 ppt  (Haryati, 2008).

## KESIMPULAN
Berdasarkan pembahasan pada bagian  di  atas  disimpulkan  bahwa pemberian  salinitas  berbeda  konsentrasi memiliki  pengaruh    terhadap  kinerja pertumbuhan  Spirulina.    Biomassa tertinggi  terdapat  pada  slinitas  30  ppt dan biomassa terendah pada salinitas 20 ppt.  Puncak  pertumbuhan  variatif  dan tertinggi terjadi pada hari keenam.
https://doi.org/10.46252/jsai-fpik-unipa.2022.Vol.6.No.2.234 e - ISSN 2550-0929

## UCAPAN TERIMA KASIH
Ucapan  terima  kasih  terutama disampaikan  kepada  pimpinan  Pasca- sarjana  UNG  yang  telah  memfasilitasi biaya  publikasi  artikel  ini  dan    kepada penanggungjawab laboratorium di BPBAP  Jepara  yang  telah  memberikan kesempatan penelitian.
.

## DAFTAR PUSTAKA
Astiani,  F.,  Dewiyanti,  I.,  &  Mellisa,  S.
(2016).  Pengaruh  Media  Kultur
Yang  Berbeda  Terhadap  Laju Pertumbuhan Dan Biomassa Spirulina sp. Jurnal Ilmiah Mahasiswa Kelautan Dan Perikanan Unsyiah , 1 (3), 441–447. Bangun,  H.,  Hutabarat,  S.,  &  Ain,  C. (2015). Perbandingan Laju Pertumbuhan Spirulina platensis Pada  Temperatur  Yang  Berbeda Dalam Skala Laboratorium. DIPONEGORO  JOURNAL  OF MAQUARES  MANAGEMENT  OF AQUATIC RESOURCES , 4 (1), 74– 81. Buwono,  N.,  &  Nurhasan,  R.  (2018). Studi Pertumbuhan Populasi Spirulina sp.  pada  Skala  Kultur yang  Berbeda  Study  of Spirulina sp.  Population  Growth  in  The Different  Culture  Scale. Jurnal Ilmiah  Perikanan  Dan  Kelautan , 10 (1), 26–33. https://doi.org/10.20473/jipk.v10i1 .8202 Caturwati,  L.,  &  Setyati,  R.  (2020). Optimation of Spirulina sp.
Growth  in  Walne  Media  with Variation  of  Urea  and  NaHCO3 Supplements. Journal  of  Tropical Biodiversity  and  Biotechnology , 5 (1), 53–58. https://doi.org/10.22146/jtbb.5363 5 Christwardana,  M.,  &  Nur,  M.  M.  A. (2013). Spirulina platensis : Potensinya Sebagai Bahan Pangan
Fungsional . 2 (1), 1–4.
Dewi,  T.,  Nurbaity,  A.,  Suryatmana,  P.,
& Sofyan, E. (2017). Efek Sterilisasi  dan  Komposisi  Media Produksi  Inokulan  Fungi  Mikoriza Arbuskula terhadap Kolonisasi
Akar,  Panjang  Akar  dan  Bobot
Kering Akar Sorgum. Jurnal Agro , 4 (1), 24–31. https://doi.org/10.15575/1205 Kusdarwati,  R.,  Bustaman,  R.,  &  Arief, M.  (2011).  Pengaruh  Perbedaan Warna Cahaya Terhadap Pertumbuhan  Kultur Spirulina Sp.
Phys.  Rev.  E , 3 (2),  183–191. http://ridum.umanizales.edu.co:808 0/jspui/bitstream/6789/377/4/Muño z_Zapata_Adriana_Patricia_Artícu lo_2011.pdf Muliani,  M.,  Ayuzar,  E.,  &  Amri,  M. (2018). Pengaruh Pemberian Pupuk  Kascing  (Bekas  Cacing) Yang  Difermentasi  Dengan  Dosis Yang Berbeda Dalam Kultur Spirulina Sp. Acta  Aquatica: Aquatic  Sciences  Journal , 5 (1),
30–35.
https://doi.org/10.29103/aa.v5i1.65 8
Muyassaroh,  Dewi,  R.  kartika,  & Anggorowati,  D.  (2018). Kultivasi Mikroalga Spirulina Platensisdengan Variasi Pencahayaan Menggunakan Lampu Tl Dan Matahari . September , 381–387. Padang, A. (2013). Pertumbuhan fitoplankton Coccolithophore sp di Wadah Terkontrol Dengan Kepadatan Inokulum Yang Berbeda. Agrikan: Jurnal Agribisnis Perikanan , 6 , 33. https://doi.org/10.29239/j.agrikan.6
.0.33-38
Putri,  D.  L.  (2019). Optimasi  pH Pertumbuhan  Mikroalga  Spirulina sp. Menggunakan Air Laut yang di
https://doi.org/10.46252/jsai-fpik-unipa.2022.Vol.6.No.2.234

## Perkaya Media Walne . 1–97.
Rahim,  T.,  Tuiyo,  R.,  &  Hasim,  H.
(2015). Pengaruh Salinitas Berbeda terhadap Pertumbuhan dan Tingkat Kelangsungan  Hidup  Benih  Ikan Nila Merah ( Oreochromis Niloticus  )  di  Balai  Benih  Ikan Kota  Gorontalo. Jurnal  Ilmiah Perikanan Dan Kelautan , 3 (1), 39–
43.
Ravelonandro,  P.,  Ratianarivo,  D., Joannis-Cassan,  C.,  Isambert,  A., &  Raherimandimby,  M.  (2011).
Improvement  of  the  growth  of
Arthrospira  (Spirulina)  platensis from  Toliara  (Madagascar):  Effect of  agitation,  salinity  and  CO2 addition. Food  and  Bioproducts Processing , 89 (3), 209–216. https://doi.org/10.1016/j.fbp.2010. 04.009
Richmond, A. (2004). Microalgal Culture . 566.
Robi,  N.  (2014).  Pemanfaatan  ekstrak tauge  kacang  hijau  (phaseolus radiatus)  sebagai  pupuk  untuk meningkatkan  populasi Spirulina sp.  In Skripsi  S-1  Budidaya Perairan .
Sánchez,  M.,  Bernal-Castillo,  J.,  Rozo, C.,  &  Rodríguez,  I.  (2003). Spirulina (arthrospira):  an  edible microorganism:
a
review.
Universitas  Scientiarum , 8 (1),  7– 24.
Suminto.  (2009).  Penggunaan  Jenis Media  Kultur  Teknis  Terhadap Produksi  Dan  Kandungan  Nutrisi Sel Spirulina platensis. Jurnal Saintek Perikanan , 4 (2), 53–61.
Utomo,  N.  B.  P.,  Winarti,  &  Erlina,  A.
(2005).  Pertumbuhan Spirulina
platensis  yang  dikultur  dengan Pupuk  Inorganik  (Urea,  TSP  dan
ZA) dan
Kotoran Ayam. Akuakultur Indonesia , 4 (1), 63–67.
Widianingsih,  Ridho,  A.,  Hartati,  R.,  &
Harmoko. (2008). Kandungan Nutrisi Spirulina platensis  yang Dikultur pada Media yang Berbeda. ILMU KELAUTAN: Indonesian  Journal  of  Marine
Sciences , 13 (3), 167–170.
Yusuf,  M.,  Handoyo,  G.,  &  Wulandari, S.  (2012).  Karakteristik  Pola  Arus
Dalam  Kaitannya  dengan  Kondisi Kualitas  Perairan  dan  Kelimpahan Fitoplankton  di  Perairan  Kawasan Taman Nasional Laut Karimunjawa. Buletin Oseanografi Marina , 1 (5), 63–74.