## PENGHAMBATAN PEMBENTUKAN HISTAMIN PADA DAGING
IKAN TONGKOL ( Euthynnus affi nis ) OLEH QUERCETIN

## SELAMA PENYIMPANAN
Histamine Inhibition on Mackerel (Euthynus affi nis) Flesh by using Quercetine during Storage

## Nanda Radithia Prasetiawan, Tri Winarni Agustini*, Widodo Farid Ma’ruf
Laboratorium Teknologi Hasil Perikanan, Jurusan Perikanan Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, Universitas  Diponegoro Jl. Prof. Soedarto, SH, Kampus Tembalang, Semarang 50275 – Indonesia Telp. 024-7474698; Fax. 024-7474698 *Korespondensi: e-mail: tagustini@yahoo.com
Diterima 25 April 2013/Disetujui 22 November 2013

## Abstract
Eff ect of adding quercetine to histamine development on mackerel fl esh during storage at room temperature was investigated. Addition of quercetine of 0.5, 1.0, and 1.5% resulted in decreased on histamine level and TPC of mackerel fl esh aft er storage for 12, 24, and 36 hours. Histamine level decreased signifi cantly aft er 12 hours storage corresponding to diff erent concentration of quercetine (0.5, 1.0, and 1.5%) with value starting from (74.613±0.513) mg/100 g to (15.805±1.061) mg/100 g, (9.510±0.658) mg/100 g, and (3.635±0.580) mg/100 g, respectively. Amino acid of histidine decreased slower for added quercetine treatment compared to that without added quercetin treatment (control) during storage at room temperature.
Keywords: histamin, histidin, mackerel, quercetine, total plate count

## Abstrak
Pengaruh penambahan quercetin terhadap kadar histamin daging ikan tongkol ( Euthynnus affi nis ) selama penyimpanan pada suhu ruang dibahas melalui penelitian ini. Penambahan 0,5; 1,0; dan 1,5% quercetin menyebabkan penurunan kadar histamin dan TPC daging ikan tongkol lumat pada penyimpanan jam ke-12, 24, dan 36. Kadar histamin mengalami penurunan yang signifi kan pada jam ke-12 dari (74,613±0,513) mg/100 g menjadi (15,805±1,061) mg/100 g, (9,510±0,658) mg/100 g, dan (3,635±0,580) mg/100 g pada perlakuan penambahan 0,5; 1,0; dan 1,5% secara berurutan. Asam amino histidin daging ikan tongkol dengan perlakuan penambahan quercetin mengalami penurunan yang lebih lambat selama penyimpanan dibandingkan perlakuan tanpa penambahan quercetin (kontrol).
Kata kunci: histamin, histidin, ikan tongkol, quercetin, total plate count

## PENDAHULUAN
Histamin adalah senyawa amin biologis heterosiklik primer aktif yang terbentuk pada fase post mortem daging ikan famili Scombroid dan non-Scombroid yang banyak mengandung histidin bebas (Nahla dan Farag 2005). Histamin terbentuk melalui dekarboksilasi terhadap asam amino histidin oleh enzim dekarboksilase eksogenus
yang dihasilkan oleh mikroba pada ikan (Ndaw et al. 2007). Histamin stabil terhadap pemanasan dan tahan terhadap proses pengolahan termasuk proses pengalengan (McLauchin et al. 2005).
Ikan dapat mengandung sejumlah histamin yang bersifat toksik tanpa menampakkan karakteristik pembusukan jika diamati melalui parameter sensorik
JPHPI 2013, Volume 16 Nomor 2
Penghambatan pembentukan histamin, Prasetiawan, et al.
dan histamin (Riviere et al. 2009). Beberapa laporan sebelumnya menunjukkan bahwa quercetin merupakan inhibitor bagi enzim histidin dekarboksilase (Nitta et al. 2009). Beberapa faktor tersebut memungkinkan quercetin dapat digunakan sebagai penghambat pembentukan histamin pada daging ikan.
Tujuan penelitian ini menentukan kemampuan quercetin dalam menghambat pembentukan histamin pada daging ikan tongkol selama penyimpanan pada suhu ruang. Penggunaan suhu ruang selama penyimpanan bermaksud untuk melihat secara lebih cepat pengaruh quercetin dalam menghambat pembentukan histamin. Hasil yang didapatkan diharapkan akan memberikan pengaruh yang lebih baik dalam menghambat pembentukan histamin daging ikan yang disimpan pada suhu yang lebih rendah. Penelitian ini bermanfaat untuk memberikan gambaran awal tentang kemampuan quercetin yang ditambahkan ke daging  ikan tongkol dalam menghambat perkembangan pembentukan histamin.

## BAHAN DAN METODE Bahan dan Alat
Ikan tongkol yang digunakan merupakan tangkapan one day fi shing dari perairan Utara Jawa Tengah dengan rata-rata panjang (45±3,1) cm dan berat (951,5±37,7) g. Ikan dipilih secara acak dan dilakukan uji organoleptik ikan segar berdasarkan 01-2346-2006 (BSN 2006a). Selama transportasi ikan-ikan tersebut diberikan perlakuan pendinginan menggunakan es. Quercetin yang digunakan adalah quercetin hidrat dengan kemurnian 95% (Sigma Aldrich).
Alat utama yang digunakan dalam penelitian ini untuk uji histamin adalah spektrofl ourometer ( Cary Eclipse ), uji histidin menggunakan spektrofotometer ( Spectronic Instrument 200+), dan analisis total plate count (TPC) menggunakan stomacher ( Interscience
Bagmixer ), dan cawan petri berisi plate count agar (PCA).
yang umum digunakan (Codex Alimentarius Commission 2001). Konsumsi terhadap ikan yang mengandung histamin lebih dari 100 mg/100 g dapat menyebabkan sakit dengan simtom kardiovaskular (tubuh serasa berputar, urticaria, hipotensi, dan pusing), gantroenteritis (kejang perut, diare, dan muntah), dan neurologis (sakit dan paraesthesiae) (McLauchin 2005).
Suhu rendah dapat mengontrol bakteri pembentuk histamin (Kerr et al. 2002), tetapi enzim histidin dekarboksilase yang telah terbentuk akan terus menghasilkan histamin sekalipun bakteri pembentuknya tidak aktif. Enzim histidin dekarboksilase aktif pada ataupun mendekati suhu pembekuan (Sea Grant Collage Programe 2001).
Histamin dapat dikatabolisasi oleh enzim diamin oksidase dan histamin metil transferase (Shiozaki et al. 2003). Laporan sebelumnya menunjukkan hasil fermentasi menggunakan A. oryzae IFO 4202 dimungkinkan efektif dalam menurunkan kadar histamin (Kakio et al. 1997). Berbagai senyawa alami juga berperan dalam destruksi (Th adhani et al. 2001) dan penghambatan pembentukan histamin pada ikan (Brillantes et al. 2002).
Quercetin merupakan senyawa natural yang tergolong ke dalam jenis fl avonoid yang terbentuk dari dua cincin benzena yang dihubungkan dengan cincin heterosiklikpiron (National Toxicology Programme 1992). Quercetin tersebar luas pada tanaman dan buah-buahan (de Miranda et al. 2008) termasuk bawang, apel, anggur, teh, berry , tomat, dan brokoli (Lakhanpal dan Rai 2007). Quercetin digolongkan sebagai bahan aktif dengan berbagai kemampuan biologis termasuk antiinfl amatori, antikanker, antibakteri, antivirus, antigonadotropik, dan antihepatotoksik (Arya et al. 2007). Quercetin juga tergolong antioksidan kuat dikarenakan kemampuannya mengikat radikal bebas dalam jumlah besar dan mengikat ion metal transisi (Bentz 2009).
Quercetin memiliki sifat antibakteri terhadap
beberapa bakteri penghasil histidin dekarboksilase

## Metode Penelitian

## Perlakuan Penambahan Quercetin
Prosedur penambahan quercetin pada sampel mengacu pada Sakai et al. (2009). Ikan tongkol difi llet, dan dipotong menjadi 5 bagian. Potongan daging yang digunakan adalah daging pada posisi diatas rongga perut dekat kepala (Frank et al. 1981). Kemudian daging dilumatkan menggunakan meat mincer/food processor selama 2 kali 30 detik. Daging lumat ditambahkan dengan 0 (kontrol); 0,5; 1,0; dan 1,5% quercetin dan dicampur hingga rata. Sampel disimpan selama 36 jam pada suhu ruang. Dilakukan uji kadar histamin, histidin, dan TPC pada jam ke-0, 12, 24, dan 36 penyimpanan.
Uji Kadar Histamin ( BSN 2009 )
Uji kadar histamin dilakukan menggunakan spektrofl ourometer ( Cary Eclipse ) dengan metode mengacu pada SNI 2354.10:2009 yang dinyatakan dalam mg/100g sampel berdasarkan perhitungan:
dua kali ulangan pada setiap perlakuannya. Konsentrasi penambahan quercetin merupakan sub plot, sedangkan lama waktu penyimpanan adalah main plot .

## Analisis Data
Data diolah menggunakan Microsoft Offi ce  Excel ( Microsoft   Inc ., USA) Kadar histamin, kadar histidin dan nilai TPC dianalisis menggunakan analisis sidik ragam (ANOVA) pada level signigikansi 0,05.

## HASIL DAN PEMBAHASAN Kadar Histamin
Kadar histamin daging ikan tongkol dengan penambahan quercetin dalam berbagai konsentrasi selama penyimpanan tersaji pada Gambar 1. Kadar histamin daging ikan tongkol pada awal penyimpanan berada pada nilai 0,247 mg/100 g untuk semua perlakuan penambahan quercetin. Tuna segar pada dasarnya tidak mengandung histamin (Frank et al. 1981), namun Silva et al. (2010) melaporkan bahwa kadar histamin tuna segar bervariasi antara 0,071 mg/100 g hingga 0,530 mg/100 g.
Kadar histamin daging ikan tongkol dengan penambahan quercetin dalam berbagai konsentrasi meningkat secara signifi kan (p<0,05) seiring berjalannya proses penyimpanan. Penyimpanan jam ke-24 dan 36 kadar histamin daging ikan tongkol tanpa perlakuan penambahan quercetin (kontrol) mencapai nilai berturut-turut 132,625 mg/100 g
Uji Kadar Histidin ( Apriyantono et al. 1989 ) Uji kadar histidin dilakukan menggunakan spektrofotometer ( Spectronic Instrument 200+) dengan metode mengacu pada yang dinyatakan dalam % sampel.
Analisis TPC ( BSN 2006a )
Analisis TPC dilakukan berdasar SNI 01-2332.3-2006. Lumatan daging ikan sebesar 25 g dimasukkan ke dalam kantong plastik steril yang berisi 225 mL larutan BFP. Larutan tersebut kemudian diaduk menggunakan stomacher (Interscience bag mixer) selama 2 menit. Setelah pelarutan bertahap, 1 mL larutan dituangkan pada cawan Petri berisi PCA. Cawan-cawan tersebut lalu diinkubasi pada suhu 35oC selama 48 jam.

## Rancangan Percobaan
Penelitian ini merupakan penelitian eksperimental menggunakan rancangan acak lengkap dengan pola split plot in time dengan
Gambar 1 Kadar histamin daging ikan tongkol
( Euthynnus affi nis ) (mg/100 g): ( ....... ) 0%; ( ....... ) 0,5%; ( ....... ) 1,0%; ( ....... ) 1,5%.
JPHPI 2013, Volume 16 Nomor 2
Penghambatan pembentukan histamin, Prasetiawan, et al.
dan 197,625 mg/100 g. Frank et al. (1981) melaporkan bahwa daging ikan tuna yang telah disimpan selama 22,5 jam pada suhu 32,2oC mengandung 146 mg/100 g histamin. Peningkatan kadar histamin yang pesat merupakan akibat dari pertumbuhan bakteri penghasil histamin yang optimum (Kanki et al.
2007), kerja enzim histidin dekarboksilase (Mangunwardoyo et al. 2007) dan tersedianya substrat enzim histidin dekarboksilase. Beberapa peneliti melaporkan bahwa ikan tuna segar mengandung histidin bebas dalam jumlah besar (Zarei et al. 2010) yang nilainya lebih dari 1000 mg/100 g (Ko 2006).
Penambahan quercetin menyebabkan terhambatnya proses pembentukan histamin selama 36 jam penyimpanan. Penghambat pembentukan histamin yang nyata terjadi pada penyimpanan jam ke-12 (p<0,05). Kadar histamin daging ikan dengan penambahan 0,5%; 1%; dan 1,5% secara berturut-turut adalah 15,805 mg/100 g; 9,510 mg/100 g;  dan 3,635 mg/100 g, sedangkan kadar histamin daging dengan perlakuan penambahan 0% quercetin adalah 74,613 mg/100 g. Sifat antibakteri quercetin berperan terhadap perlambatan pertumbuhan bakteri penghasil histamin pada awal penyimpanan yang mengakibatkan perlambatan akumulasi enzim histidin dekarboksilase. Bakteri penghasil histamin yang dapat dihambat oleh quercetin adalah Staphylococcus aureus (de- Souza et al. 2010), Klebsiella pneumuniae
(Aziz et al. 1998), Enterobacter cloacae, Enterobacter aerogenes (Sannomiya et al. 2005), Clostridium perfringens (Lee dan Kim 2002), Escherichia coli (Sandhar et al. 2011). Jeff rey et al. (1972) melaporkan adanya perpanjangan fase lag pertumbuhan bakteri akibat hadirnya senyawa fl avonoid. Kerja quercetin sebagai inhibitor enzim histidin dekarboksilase (Middleton et al. 2000) dimungkinkan juga menyebabkan perlambatan akumulasi histamin selama penyimpanan. Pembentukan histamin dari histidin oleh enzim dekarboksilase menunjukkan bahwa semakin tinggi konsentrasi quercetin yang
ditambahkan pada lumatan daging ikan, maka perombakan histidin menjadi histamin semakin diperlambat. Proses tersebut terlihat dari jumlah penurunan histidin yang semakin lambat dengan meningkatnya konsentrasi quercetin selama penyimpanan.
Penyimpanan jam ke-24 kadar histamin daging ikan tongkol dengan perlakuan penambahan 0%; 0,5%; 1,0%; 1,5% quercetin secara berurutan, yaitu 132,63 mg/100 g; 128,02 mg/100 g; 122,67 mg/100 g; dan 98,35 mg/100 g, sedangkan jam ke-36, yaitu    197,63  mg/100  g;  192,79  mg/100  g; 179,75 mg/100 g; dan 179,75 mg/100 g. Tampak adanya penurunan aktivitas quercetin dalam menghambat pembentukan histamin. Perlakuan penambahan 0,5% quercetin tidak dapat mempertahankan aktivitasnya dalam menghambat pembentukan histamin, sedangkan penambahan 1,5% quercetin dapat menyebabkan penurunan kadar histamin yang signifi kan (p<0,05). Hal ini berkaitan dengan proses oksidasi terhadap quercetin (Zenkevich et al. 2007) dan perubahan struktur quercetin akibat reaksi dengan radikal bebas hasil oksidasi lipida (Dhaouadi et al. 2009). Hasil ANOVA kadar histamin daging ikan tongkol dengan perlakuan penambahan quercetin dalam berbagai konsentrasi menunjukkan perbedaan yang sangat nyata (p<0,01).

## Kadar Histidin
Kadar histidin daging ikan tongkol dengan penambahan quercetin dalam berbagai konsentrasi selama penyimpanan disajikan pada Gambar 2. Kadar histidin daging ikan tongkol pada awal penyimpanan berada pada nilai 2.497 mg/100 g untuk semua perlakuan penambahan quercetin. Tuna mengandung lebih dari 2.000 mg/100 g asam amino histidin (Apituley et al. 2006). Histidin pada daging ikan tuna sebagian besar merupakan bagian dari jaringan otot skeletal yaitu carnosin dan anserin (Li et al. 2008).  Asam amino histidin pada ikan merupakan komponen utama dari buff er non karbonat yang melindungi ikan dari perubahan pH (Abe 2000).
Kadar histidin daging ikan tongkol dengan penambahan quercetin dalam berbagai konsentrasi turun secara signifi kan  (p<0,05) seiring berjalannya proses penyimpanan. Ziaeian et al. (2008) melaporkan bahwa kadar histidin ikan tuna ( Th unnus tonggol ) juga mengalami penurunan selama penyimpanan. Daging ikan tanpa penambahan quercetin mangalami penurunan histidin paling besar selama penyimpanan. Kadarnya turun menjadi 1.523 mg/100 g pada akhir penyimpanan.  Penurunan asam amino histidin selama penyimpanan diakibatkan oleh kerusakan enzimatis akibat aktivitas enzim histidin dekarboksilase (Kanki et al. 2007) dan L-histidin ammonia-lyase (Lehane dan Olley 1999) yang menghasilkan histamin dan glutamate (Stifel dan Herman 1971). Kerusakan diperbesar oleh aktivitas mikrobiologis (Baranowski 1985) dan reaksi hasil oksidasi lipida dengan histidin (Munasinghe et al.
2005). Oksidasi terhadap histidin juga terjadi pada daging ikan  (Braddock dan Dugan 1973) selama penyimpanan  yang menghasilkan 4(5)-imidazolecarboxaldehyde (Mason et al. 2010), aspartat, dan urea (Fennema 1996).
Penambahan quercetin menyebabkan penurunan kadar histidin yang lebih kecil dibanding perlakuan penambahan 0% quercetin selama 36 jam penyimpanan. Kadar histidin daging ikan dengan penambahan quercetin (0,5%; 1,0%; 1,5%) setelah 36 jam penyimpanan adalah 1,67 mg/100 g; 2,04 mg/100 g; dan 2,13 mg/100 g.   Terhambatnya
pertumbuhan bakteri penghasil enzim histidin dekarboksilase dan histidin ammonia-lyase, yaitu Pseudomonas sp., E. coli (Badiwat et al. 2011), Micrococcus luteus (Santas et al. 2010), S taphylococcus
aureus (Hirai et al. 2010) merupakan salah satu penyebab melambatnya penurunan jumlah histidin selama penyimpanan.
Sifat antioksidatif senyawa quercetin pada daging ikan berperan besar dalam terhambatnya reaksi hasil oksidasi lemak dengan histidin (Montero et al. 2004) dan kerusakan oksidatif terhadap histidin. Hasil ANOVA kadar histidin daging ikan tongkol dengan perlakuan penambahan quercetin dalam berbagai konsentrasi menunjukkan perbedaan yang sangat nyata (p<0,01).

## Kadar Total Mikroba (TPC)
Nilai TPC daging ikan tongkol dengan penambahan quercetin dalam berbagai konsentrasi selama penyimpanan tersaji pada Gambar 3. Nilai TPC daging ikan tongkol dengan penambahan quercetin dalam berbagai konsentrasi pada awal penyimpanan menunjukkan perbedaan dimana daging ikan dengan penambahan quercetin yang lebih besar memiliki nilai TPC yang lebih kecil. Laporan Pakawatchai et al. (2009) menunjukkan adanya perbedaan nilai TPC pada daging  salmon lumat pada awal penyimpanan dengan perlakuan penambahan berbagai macam bumbu.
Nilai TPC daging ikan tongkol tanpa penambahan quercetin meningkat signifi kan (p<0,05) hingga mencapai log 8 pada akhir penyimpanan. Afl ial et al. (2006) melaporkan bahwa peningkatan jumlah mikrofl ora  pada ikan sardin mencapai lebih dari log 7 cfu/g setelah 25 jam penyimpanan pada suhu 30oC. Hasil tersebut diperoleh akibat dari suhu penyimpanan (Sanchez-Zapata et al. 2011) dan pH yang optimum bagi pertumbuhan mikroba (Sancez-Zapata et al. 2011).
Daging ikan tongkol dengan penambahan 1,5% quercetin menunjukkan peningkatan jumlah mikroba paling rendah selama penyimpanan disusul dengan perlakuan
Gambar 2 Kadar histidin daging ikan tongkol ( Euthynnus affi nis ) (mg/100 g): ( ....... ) 0%; ( ....... ) 0,5%; ( ....... ) 1,0%; ( ....... ) 1,5%.
Penghambatan pembentukan histamin, Prasetiawan, et al.
penambahan 1% dan 0,5% quercetin. Hasil tersebut menunjukkan bahwa konsentrasi penggunaan quercetin mempengaruhi pertumbuhan mikroba pada daging ikan. Beberapa penelitian melaporkan bahwa quercetin bersifat bakteriostatis pada bakteri pembusuk dan patogen termasuk Bacillus stearothermophilus, E. coli,
Pseudomonas fl uorescens, Salmonella enterica, Staphylococcus aureus, dan Vibrio cholerae (Rattanachaikunsopon and Phumkhachron 2010), Moraxella sp. (Cartea et al. 2011),
Klebsiella pneumuniae (Aziz et al. 1998),
Clostridium perfringens (Lee dan Kim 2002),
E. coli (Sandhar et al. 2011).
Mekanisme kerja antibakteri quercetin berkaitan dengan penghambatan sintesis asam nukleat, penghambatan fungsi membran (Cushnie dan Lamb 2005; Lee et al. 2010),  motilitas bakteri (Abdullah 2009) dan penyebaran koloni (Hirai et al. 2010). Jayamaran et al. (2010) melaporkan bahwa quercetin menyebabkan kerusakan enzimatis pada  DNA. Hasil ANOVA nilai TPC daging ikan tongkol dengan perlakuan penambahan quercetin dalam berbagai konsentrasi menunjukkan perbedaan yang sangat nyata (p<0,01).

## KESIMPULAN
Perlakuan penambahan senyawa quercetin dengan konsentrasi berbeda pada daging ikan tongkol ( Euthynnus affi nis ) menyebabkan
penurunan kadar histamin yang signifi kan sampai pada jam ke-12 penyimpanan. Setelah itu aktivitas quercetin dalam menghambat pembentukan histamin mengalami penurunan hingga akhir penyimpanan. Penambahan 1% quercetin dalam lumatan daging ikan tongkol dapat menjaga keamanan daging (berdasarkan kadar histamin) selama penyimpanan pada suhu ruang hingga 20 jam, sedangkan untuk lumatan daging ikan tanpa quercetin hanya bertahan sampai 10 jam.

## DAFTAR PUSTAKA
Abdullah MIB. 2009. Physicochemical profi ling and detection of phenolic constituents with antioxidant and antibacterial activities of Myristica fragrans houtt. [thesis]. NSF, 46 p.
Abe H. 2000. Role of histidine-related compounds as intracellular proton buff ering constituents in vertebrate muscle. Biochemistry (Moscow) 65(7): 757-765. Afl ial MA, Daoudi H, Jdaini S, Asehraou A,
Bouali A. 2006. Study of the histamine production in a red fl esh  fi sh  ( Sardina pilchardus ) and a white fl esh  fi sh ( Dicentrarchus punctatus ). Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences 6: 43-48.
Arya D, Patni V, Kant U. 2007. In vitro propagation and quercetin quantifi cation in callus cultures of rasna ( Pluchea lanceolata Oliver & Hiern.). Indian Journal of Biotechnology 7: 383-387.
Apituley DAN, Noor Z, Darmadji P, Suparmo.
2006. Dampak oksidasi protein oleh sistem oksidasi 2,2-azobis (2 am idi propane) hyhidrochloride (aaph) dan sistem katalis logam CuSO 4 /H 2 O 2 terhadap komposisi asam amino protein daging merah dan putih ikan tongkol putih ( Th unnus sp.). Majalah Ilmu dan Teknologi Pertanian 26(3):171-178.
Apriyantono A, Ferdiaz D, Puspitasari NL, Sedarnawati, Budiyanto S. 1989. Analisis Pangan . Bogor: PAU Pangan dan Gizi.
IPB Press.
Aziz NH, Farag SE, Mousa LA, Abozaid
Gambar 3 Kadar TPC daging ikan tongkol  (log cfu/g)
( Euthynnus affi nis ) (mg/100 g): ( ....... ) 0%; ( ....... ) 0,5%; ( ....... ) 1,0%; ( ....... ) 1,5%.
MA. 1998. Comparative antibacterial and antifungal eff ect of some phenolic compounds. Microbios 93: 43-45.
Badiwat S, Nag R, Nag TN. 2011. Antimicrobial principle from tissue cultures of Balatines aegyptica. Romanian Biotechnological
Letters 16(2): 6120-6124.
Bentz AB. 2009. A review of quercetin: chemistry, antioxidant properties, and bioavailability. Journal of Young Investigators 19(10).
Braddock RJ, Dugan LR. 1973. Reaction of
autoxidizing linoleate with coho salmon myosin. Journal of Th e American Oil
Chemists Society 50(9): 343-347.
[BSN] Badan Standardisasi Nasional. 2006a.
Petunjuk Pengujian Organoleptik dan atau Sensori. SNI 01-2346.2006. Jakarta: Badan Standardisasi Nasional.
[BSN] Badan Standardisasi Nasional. 2006b.
Cara Uji Mikrobiologi-Bagian 3: Penentuan Angka Lempeng Total (ALT) pada Produk Perikanan . SNI 01-2332.3.2006. Jakarta:
Badan Standardisasi Nasional.
[BSN] Badan Standardisasi Nasional. 2009. Cara Uji Kimia Bagian 20: Penentuan Kadar Histamin dengan Spektrofl uorometri  dan
Kromatografi  Cair Kinerja Tinggi (KCKT) pada Produk Perikanan. SNI 2354.10.2009. Jakarta: Badan Standardisasi Nasional. Cartea ME, Francisco M, Soengas P, Valasco P. 2011. Phenolic compounds in Brassica vegetables. Molecules 16: 251-280.
Cushnie TPT, Lamb AJ. 2005. Antimicrobial activity of fl avonoids. International Journal of Antimicrobials Agents 26:343-356.
Codex Alimentarius Commision. 2001. Report
Of Twenty-Fourth Session Of Th e Codex
Committee on Fish and Fishery Product. [Report]. FAO/WHO, Bergen, 118 p.
Dhaouadi Z, Nsangou M, Garrab N, Anouar EH, Marakchi K, Lahmar S. 2009. DFT study of the reaction of quercetin with O 2 and OH radicals. Journal of Molecular Structure: THEOCHEM 904: 35-42. de Miranda AL, Ribiero MC, Moriera RFA,
de Maria CAB. 2008. Volatile profi le  of heated soybean oil treated with quercetin
and chlorogenic acid. Ciencia e Tecnologia Alimentos, Campinas 28(4): 949-952. de-Souza L, Wahidulla S, Devi P. 2010.
Antibacterial phenolic from the mangrove Lumnitzera racemosa . Indian Journal of Marine Science 39(2): 294-298. Hirai I, Okuno M, Katsuma R, Arita N, Tachibana M, Yamamoto Y. 2010. Characterisation of anti- Staphylococcus aureus activity of quercetin. International Journal of Food Scince and Technology
45(6): 1250-1254.
Jayamaran P, Sakharkar MK, Lim CS, Tang TC, Sakharkar KR. 2010. Activity and interactions of antibiotic and phytochemical combinations againts Pseudomonas aeruginosa in vitro.
International Journal of Biological Sciences 6(6): 556-568.
Jeff rey AM, Knight M, Evans WC. 1972. Bacterial degradation of fl avonoids.
Biochemistry Journal 130: 373-381. Kakio M, Kawa Y, Kunimoto M, Yamazaki K, Inoue N, Shinano H. 1997. Chemical and microbial characteristics of sardine meal fermented with Aspergillus oryzae IFO 4202. Food Science and Technology International Tokyo 3(1): 61-68.
Kanki M, Yoda T, Tsukamoto T, Baba E. 2007. Histidine decarboxylase and their role in accumulation of histamine in tuna and dried saury. Applied and Environmental Microbiology 72(5): 1467-1473.
Kerr M, Lawicki P, Aguirre S, Rayner C.  2002. Eff ect of storage conditions on histamine formation in fresh and canned tuna. [Research Report].  Victorian Government Departemen of Human Services, Werribee, 20 p.
Lakhanpal p. rai dk. 2007. Quercetin: a versatile fl avonoid. Internet Journal of Medical Update 2(2): 22-37.
Lee HS. Kim MJ. 2002. Selective responses of three Ginkgo biloba leaf-derived constituents on human intestinal bacteria. Journal of Agricultural and Food
Chemistry 50: 1840-1844.
Lee KA, Moon SH, Kim KT, Mendonca AF,
JPHPI 2013, Volume 16 Nomor 2
Penghambatan pembentukan histamin, Prasetiawan, et al.
Paik HD. 2010. Antimicrobial eff ect of various fl avonoids  on Escherichia coli O157:H7 cell growth and lipopolysaccharide production. Food Science and Biotechnology 19(1): 257-261. Li P, Mai K, Trushenski J, Wu G. 2008. New Developments in Fish Amino acid Nutrition:
Towards Functional and Environmentally Oriented Aquafeeds . Springer, 11 p.
Mason BD, McCracken M, Bures EJ, Kerwin BA. 2010. Oxidation of free l-histidine by tert- butylhdropeloxide. Pharmaceutical Reseach 27(3): 447-465.
Mc Lauchin J, Little CL, Grant KA, Mithani V. 2005. Scombritoxic fi sh poisoning. Journal of Public Health Andvance 10: 1093. Middleton JRE, Kandaswami C, Th eoharides
TC. 2000. Th e eff ect of plant fl avonoids on mamalian cells: implications for infl amation, heart disease, and cancer.
Pharmacological Reviews 52(4): 673-751. Montero P, Gimenez B, Parez-Mateos M,  Gomez- Guillen MC. 2004. Oksidation stability of muscle with quercetin and rosemary during thermal and high-pressure gelation. Food Chemistry 93(1):17-23.
Munasinghe, D.M.S., T. Ohkubo, and T. Sakai.
2005. Th e lipid peroxidation induced changes of protein in refrigerated yellowtail minced meat. Fisheries Science 71: 462-264. Nahla TK. Farag HESM. 2005. Histamine and histamine producing bacteria in some local and imported fi sh and their public health signifi cance. Research Journal of Agriculture
and Biological Sciences 1(4): 329-336. National Toxicology Programme. 1992.
Toxicology and Carcinogenesis Studies of Quercetin in F344/N Rats . U.S.Departement of Health and Human Services, 171 p. Ndaw A, Zinedine A, Bouseta A. 2007.
Assessment of histamine formation during fermentation of sardine ( Sardina pilchardus ) with lactic acid bacteria. World Journal of Diary and Food Science 2(2): 42-48.
Nitta Y, Kikuzaki H, Ueno H. 2009. Inhibitory activity of Pimenta dioica extract and constituents on recombinant human
histidine decarboxylase. Food Chemistry 113(2): 445-449.
Pakawatchai C, Siripongvutikorn S,
Usawakesmanee W. 2009. Eff ect of herb and spice on the quality changes in minced salmon fl esh waste during chilled storage. Asian Journal Food Agriculture Industry 2(4): 481-492.
Rattanachaikunsopon P. Phumkhachron P. 2010. Content and antibacterial activity of fl avonoids extracted from leaves of Psidium guajava . Journal of Medicinal Plants Reseach 4(5): 393-396. Riviere C, Th i Hong VN, Pieters L, Dejaegher B, Heyden YV, Chau Van M, Quetin- Leclercq J. 2009. Polyphenols isolated from antiradical extracts of Mollatus metcalfi anus. Phytochemistry 70: 91-99. Sakai T, Munasinghe DMS, Kawahara S. 2009.
Eff ect of NaCl on protein oxidation in fronzen cod meat. Bulletin of the Faculty of Agriculture
University of Miyazaki 56: 115-118. Sanchez-Zapata E, Amensour M, Oliver R, Fuentes-Zaragoza E, Navarro C, Fernandez- Lopez J, Sendra E, Sayas E, Perez-Alvarez JA. 2011. Quality characteristics of dark muscle from yellowfi n tuna Th unnus albacores to its potential application in food industry. Food and Nutrition Sciences 2: 22-30.
Sandhar HK, Kumar B, Prasher S, Tiwari P,
Salhan M, Sharma P. 2011. A review of phytochemistry and pharmacology of fl avonoids. International Pharmaceutica Sciencia 1(1): 25-41.
Sannomiya M, Michelin DC, Rodrigues CM, Santos LC, Salgado HRN, Hiruma-Lima CA, Brito ARSM, Vilegas W. 2005. Byrsonima crassa Niedenzu (IK): antimicrobial activity and chemical study. Journal of Basic and Applied Pharmaceutical Science
26(1): 71-75.
Santas J, Almajano MP, Carbo R. 2010. Antimicrobial and antioxidant activity of crude onion ( Allium ceppa , L.) extract. International Journal of Food Science and Technology 45(2): 403-409.
Shiozaki K, Nakano T, Yamaguchi T, Sato M. 2003. Metabolism of exogenous histamine in rainbow trout ( Oncorhyncus mykiss ). Fish Physiology and Biochemistry 29(4): 289-295. Silva TM, Sabaini PS, Evangelista WP, Gloria MBA. 2010. Occurrence of histamine in brazilian fresh and canned tuna. Food Control 22(2): 323-327.
Stifel FB, Herman RH. 1971. Histidine metabolism. Th e American Journal of Clinical Nutrition 24: 207-217.
Th adani VM, Jansz ER, Peiris H. 2001.
Destruction of  histamine by cooking ingredients an artifact of analysis. Journal of the National Science Foundation of Sri Lanka 29(3): 129-135.
Zarei M, Mollaie A, Eskandari MH, Pakfetrat S, Shekarforoush S. 2010. Histamine and heavy metals content of canned tuna fi sh. Global Veterinaria 5(5): 259-263.
Zenkevich IG, Eschchenko AY, Makarova SV, Vitenberg AG, Dobryakov YG, Utsal VA. 2007. Identification of the product of oxidation of quercetin by air oxygen at ambient temperature.
Molecules 12: 654-672. Ziaeian H, Moini S, Jamili S. 2008. Consequences of fronzen storange of amino acids and unsaturated fatty acid of tuna ( Thunmnus tonggol ) roe. Journal of Fisheries and Aquatic Science 3(6): 410-415.