## Livestock and Animal Research
Accredited by Directorate General of Strengthening for Research and Development No. 10/E/KPT/2019
Open Access Livest. Anim. Res. , November 2022, 20(3): 267-274
p-ISSN 2721-5326 e-ISSN 2721-7086 https://doi.org/10.20961/lar.v20i3.61288

## Original Article
Gambaran Escherichia coli resistan antibiotik asal tangan pemerah, ambing sapi, susu serta air di peternakan sapi perah Kecamatan Cendana,

## Enrekang, Sulawesi Selatan
Milawarni Milawarni 1,* , Herwin Pisestyani 2 , Denny Widaya Lukman 2
1 Program  Pascasarjana  Peminatan  Kesehatan  Masyarakat  Veteriner,  Program  Studi  Ilmu  Biomedis  Hewan 1 Sekolah Pascasarjana, Institut Pertanian Bogor, Bogor, 16680
2 Divisi Kesehatan Masyarakat Veteriner dan Epidemiologi, Sekolah Kedokteran Hewan dan Biomedis, Institut 2 Pertanian Bogor, Bogor, 16680 * Correspondence: 15milawarni@apps.ipb.ac.id
Received: May 17 th , 2022; Accepted: October 15 th , 2022; Published online: November 9 th , 2022

## Abstrak
Tujuan: Penelitian  ini  bertujuan  mengetahui  gambaran  resistansi Escherichia  coli ( E.  coli) terhadap beberapa  antibiotik  yang  diisolasi  dari  air,  swab  tangan  pemerah,  swab  ambing  sapi  dan  susu  di peternakan sapi perah Enrekang, Sulawesi Selatan.
Metode: Isolasi  dan  identifikasi E.  coli mengacu  pada SNI  2897:2008  tentang  Metode  Pengujian Cemaran  Mikroba  dalam  Daging,  Telur  dan  Susu,  serta  Hasil  Olahannya.  Uji  resistansi E.  coli terhadap antibiotik dengan metode difusi cakram dan interpretasi hasil mengacu pada Clinical and Laboratory  Standards  Institute  (CLSI).  Sampel  berupa  13  swab  tangan  pemerah,  52  swab  ambing sapi, 52 susu individu, dan 13 air yang digunakan untuk kegiatan pemeliharaan.
Hasil: Isolat E. coli (n=64) yang terdiri dari 7 isolat dari swab tangan pemerah, 20 isolat dari swab ambing, 31 isolat dari susu, dan 6 isolat dari air. Isolat E. coli telah resistan terhadap eritromisin dan ampisilin masing-masing sebanyak 78% (50/64), trimetoprim-sulfametoksasol 34,4% (22/64), tetrasiklin 31%  (20/64),  ceftazidime  25%  (16/64),  kloremfenikol  22%  (14/64),  enrofloksasin  9,4%  (6/64),  dan gentamisin  4,6%  (3/64).  Pola  resistansi E.  coli terhadap  antibiotik  menunjukkan  isolat E.  coli MDR hingga 7 antibiotik sekaligus.
Kesimpulan: Isolat E.  coli asal  pemerah,  sapi,  susu  dan  air  di  kawasan  peternakan  sapi  perah Enrekang, Sulawesi Selatan telah mengalami resistansi terhadap beberapa jenis antibiotik dan dapat menyebarkan gen resistan ke bakteri lain serta mengancam kesehatan manusia, hewan, dan lingkungan.
Kata Kunci: Air; E. coli ; Resistansi antibiotik; Susu; Swab ambing; Swab tangan

## Abstract
Objective: This study aimed to describe the resistance of E. coli to several types of antibiotics isolated from water, milker hand swabs, cow udder swabs and milk in the Enrekang dairy farm, South Sulawesi. Methods: Isolation and identification of E. coli refers to SNI 2897:2008 concerning Methods for Testing Microbial Contamination in Meat, Eggs and Milk, and  their Processed Products. The test of E. coli resistance to antibiotics by disc diffusion method and interpretation of the results refers to the Clinical
and Laboratory Standards Institute (CLSI). The samples were 13 milker hand swabs, 52 cow udder swabs, 52 individual milks, and 13 water used for rearing activities.
Results: E. coli isolates (n=64) consisted of 7 isolates from hand swabs, 7 isolates from milking hands, 20 isolates from udder swabs, 31 isolates from milk, and 6 isolates from water. E. coli  isolates were resistant  to  erythromycin  and  ampicillin  as  much  as  78%,  trimethoprim-sulfamethoxazole  34.4%, tetracycline 31%, ceftazidime 25%, chloremphenicol  22%, enrofloxacin 9.4%, and gentamicin 4.6%. The pattern of E. coli resistance to antibiotics showed that the isolates of E. coli multiple drugs were resistant to up to 7 antibiotics at once.
Conclusions: E. coli isolates from milk, cows, milk and water in the Enrekang dairy farming area, South  Sulawesi  has  developed  resistance  to  several  types  of  antibiotics  and  have  the  potential  to spread resistance genes to other bacteria and threaten human, animal and environmental health.
Keywords: Antibiotic resistance; E. coli ; Hand swab; Milk; Udder swab

## PENDAHULUAN
Antimicrobial  Resistance (AMR)  saat  ini telah berkembang menjadi ancaman terhadap kesehatan  masyarakat  dan  kesehatan  hewan. AMR  adalah  kemampuan  mikroorganisme untuk  mencegah  antibiotik  bekerja  melawan bakteri.  Penyakit  akibat  infeksi  bakteri  pada manusia  dan  hewan  sulit  untuk  diobati, penurunan  kualitas  hidup,  kematian,  serta program-program  peningkatan  kesehatan mengalami  penurunan  keberhasilan  akibat adanya  kejadian  AMR  [1].  Penyebaran  AMR dapat menyebabkan bakteri patogen jauh lebih mematikan di masa depan daripada sekarang jika tidak segera diatasi [2].
Bakteri  patogen  tular  pangan  ( foodborne pathogen ) yang resistan antibiotik dapat ditularkan ke populasi manusia melalui produk pangan sehingga  menjadi  perhatian  penting  bagi kesehatan masyarakat. Bakteri resistan antibiotik juga  dapat  menyebarkan Antibiotic  Resistance Genes (ARGs) yang dapat dipindahkan ke bakteri patogen atau komensal di saluran pencernaan manusia  dan  hewan  [3].  Perpindahan  ARGs dapat melalui media di lingkungan, seperti di air, tanah, udara, makanan, dan makhluk hidup sehingga meningkatkan penyebaran bakteri yang resistan terhadap antibotik di lingkungan [4].
Penggunaan  antibiotik  untuk  pengobatan yang  tidak  bijak  pada  hewan  menyebabkan peternakan  menjadi  salah  satu  sumber penyebaran  bakteri  resistan  antibiotik  [5]. Perpindahan  gen  resistan  dapat  terjadi  dari lingkungan luar  kandang ke dalam  lingkungan kendang.  Gen  resistan  dapat  tersimpan  di lingkungan  sekitar  kandang  yang  dapat berpindah  antar  bakteri.  Perpindahan  gen
resistan  dapat  melalui  kontak  langsung  atau tidak langsung, makanan, air, dan feses hewan ke lingkungan pertanian [6].
E.  coli merupakan  mikrorganisme  yang paling  sering  mengalami  resistansi  antibiotik [7].  dan  diekskresikan  dari  saluran  pencernaan manusia  dan  hewan. E.  coli dapat  bersifat komensal  maupun  bersifat  patogen  pada manusia dan hewan [8]. Selain dapat ditemukan di  lingkungan, E.  coli juga  dapat  ditemukan pada proses produksi dan pekerja [9].
Produk pangan asal hewan atau melalui kontak  langsung  dengan  hewan  dapat menyebarkan E. coli resistan ke manusia [10]. Pupuk kandang dari peternakan dapat menjadi media  yang  menyebarkan  bakteri  resistan antibiotik  bagi  peternakan  maupun  manusia ke lingkungan [11].
Kabupaten Enrekang merupakan kabupaten yang menjadi prioritas pengembangan peternakan sapi perah di Sulawesi Selatan dengan jumlah populasi sapi perah yaitu sebanyak 1068 ekor yang tersebar di dua belas kecamatan berdasarkan data Dinas Peternakan dan Perikanan Kabupaten Enrekang  tahun  2020.  Penelitian  mengenai resistansi  antibiotik E.  coli dari  peternakan sapi  perah  di  Enrekang  masih  sangat  jarang dilaporkan,  sehingga  hal  tersebut  menjadi dasar penelitian ini dilakukan.

## MATERI DAN METODE

## Sumber data dan ukuran sampel
Penelitian ini menggunakan data populasi sapi perah di Kecamatan Cendana, Kabupaten Enrekang,  Sulawesi  Selatan  milik  Dinas Peternakan dan Perikanan Kabupaten Enrekang tahun 2020. Ukuran sampel dihitung berdasarkan
populasi  total  sapi  perah  di  Kecamatan Cendana sebanyak 471 ekor menggunakan software  WinEpiscope  2.0  dengan  asumsi tingkat  kepercayaan  95%,  prevalensi  dugaan 10%, tingkat kesalahan 8%. Hasil perhitungan ukuran sampel sebanyak minimal 49 ekor sapi perah  yang  diambil  dari  13  peternakan  di Kecamatan Cendana.
Jenis sampel adalah sampel air peternakan yang digunakan untuk mencuci peralatan dan ambing  sapi  perah  (13  sampel),  sampel  susu individu  (52  sampel),  swab  tangan  kiri pemerah  (13  sampel),  swab  ambing  (52 sampel). Teknik penarikan sampel sapi perah tiap  peternakan  dilakukan  secara simple random sampling .

## Penanganan sampel
Pengambilan  sampel  dilakukan  pada pemerahan sore hari. Sampel diberi kode berupa tanggal  pengambilan  sampel,  jenis  sampel yang diambil, nama lokasi. Sampel kemudian disimpan  dalam cool  box yang  bersuhu  4 – 10 o C dan  dibawa  ke  laboratorium  kesmavet  Balai Besar Veteriner Maros untuk dilakukan pengujian.
Isolasi dan identifikasi E. coli
Semua  sampel  dimasukkan  ke  dalam tabung reaksi steril. Untuk sampel swab (swab tangan  pemerah  dan  swab  ambing)  diambil dengan  menggunakan  kapas  lidi  steril  dan dimasukkan  ke  dalam  tabung  reaksi  steril yang berisi 10 mL larutan buffered peptone water (BPW)  0,1%  dengan  perbandingan  1:10. Kemudian  semua  sampel  dimasukkan  ke dalam cool  box dan  dibawa  ke  laboratorium dalam  kondisi  suhu  4 – 10°C.  Selanjutnya isolasi dan identifikasi serta uji biokimia E. coli mengacu  pada  Standar  Nasional  Indonesia
(SNI)  2897  Tahun  2008  tentang  Metode Pengujian  Cemaran  Mikroba  dalam  Daging, Telur dan Susu, serta Hasil Olahannya.

## Pengujian resistansi antibiotik
Uji resistansi isolat E. coli terhadap antibiotik (eritromisin, ampisilin, tetrasiklin, trimethoprim -sulfametoksasol,  kloremfenikol,  ceftazidime, enrofloksasin, dan gentamisin dilakukan dengan metode  difusi  cakram  ( disc  diffusion  method ). Penentuan susceptible (S), intermediate (I)  dan resistant (T) ditentukan melalui ukuran diameter zona  hambat  yang  terbentuk  berdasarkan rekomendasi  standar Clinical  and  Laboratory Standards Institut (Tabel 1) [12].

## HASIL
Keberadaan E.  coli pada  tangan  pemerah, ambing sapi, susu dan air
Pada  penelitian  ini  ditemukan  isolat E.
coli pada  64  sampel  dari  130  sampel  yang diperiksa  (49%).  Isolat E.  coli diperoleh  dari swab tangan pemerah, swab ambing, susu dan air di peternakan sapi perah (Tabel 2). Isolat E. coli paling  banyak  ditemukan  pada  sampel susu  yaitu  60%  (31/52),  kemudian  sampel tangan 54% (7/13), selanjutnya sampel air 46% (6/13) dan sampel swab ambing 38% (20/52).
Resistansi E. coli yang diisolasi dari  tangan pemerah, ambing sapi, susu dan air
Hasil pengujian resistansi E . coli terhadap antibiotik menunjukkan tingkat resistansi isolat E. coli paling tinggi terhadap eritromisin dan ampisilin masing-masing sebanyak 78%, trime toprim-sulfametoksasol 34,4%, tetrasiklin  31%, ceftazidime 25%, kloremfenikol 22%, enrofloksasin
Tabel 1. Standar interpretasi diameter zona hambat (CLSI 2020)
Group antibiotik Antibiotik Isi disk (µg) Diameter zona hambat (mm) S* I* R* β -laktam Ampisilin (AMP) 10 ≥17 14-16 ≤13 Sefalosporin Ceftazidime (CAZ) 30 ≥21 18-20 ≤17 Aminoglikosida Gentamisin (CN) 10 ≥15 13-14 ≤12 Fluroquinolon Enrofloksasin (ENR) 5 ≥23 17-22 ≤16 Makrolida Eritromisin (E) 15 ≥23 14-22 ≤13 Fenikol Kloremfenikol (C) 30 ≥18 13-17 ≤12 Potentiated sulfonamides Trimetoprin- sulfametoksasol (SXT) 1,25/23,75 ≥16 11-15 ≤10 Tetrasiklin Tetrasiklin (TE) 30 ≥19 15-18 ≤14
9,4%, dan gentamisin 4,6%  (Grafik 1). Hasil pengujian resistansi antibiotik juga menunjukkan adanya isolat E. coli yang diperoleh dari suatu peternakan resistan pada antibiotik yang sama yaitu pada ampisilin dan eritromisin.
E. coli multiple drugs resistance (MDR) antibiotik
Pengujian resistansi isolat E. coli terhadap antibiotik menunjukkan sifat resistan minimal terhadap  1  jenis  antibiotik  dan  maksimal  7 jenis antibiotik. Sebanyak 22% (14/64) isolat E. coli menunjukkan sifat MDR terhadap 2 jenis antibiotik  yaitu  ampisilin  dan  eritromisin, selanjutnya 9,3% isolat E. coli menunjukkan sifat MDR terhadap 4 jenis antibiotik yaitu ampisilin, eritromisin,  tetrasiklin  dan  caftazidim  dan  1,5% isolat E. coli MDR terhadap 7 antibiotik sekaligus yaitu  ampisilin,  eritromisin,  trimetoprim- sulfametoksasol,  ceftazidime,  kloremfenikol, enrofloksasin, dan gentamisin (Tabel 2).

## PEMBAHASAN
Bakteri E.  coli merupakan  indikator pencemaran fekal pada susu dan peralatan perah.
Pada penelitian ini, sebanyak 60% (31/52) sampel susu  positif E.  coli. Kontaminasi E.  coli pada susu  dapat  berasal  dari  kontak  langsung dengan feses, air tercemar, dan tangan pemerah. Keberadaan E. coli merupakan indikator higiene yang  buruk  dan  praktik  sanitasi  yang  buruk selama pemerahan dan penanganan susu [13].
Hasil pengujian dari sampel swab tangan pemerah ditemukan sebanyak 54% (7/13) sampel positif E.  coli .  Menurut  Navab-Daneshmand [14],  tingginya  kontaminasi E.  coli secara substansial  dikontribusikan  oleh  keberadaan kotoran  dan  pasir.  Kontaminasi E.  coli pada tangan dapat disebabkan oleh kegiatan rumah tangga seperti membersihkan piring, menyiapkan makanan,  dan  menyapu.  Pada  penelitian  ini, pengambilan  sampel  swab  tangan  dilakukan pada saat peternak telah mencuci tangan dan belum melakukan pemerahan. Hal ini menunjukan bahwa pemerah tidak mencuci tangan dengan baik dan benar  sebelum proses pemerahan sehingga  masih  ditemukan  adanya  sampel positif E. coli .
Hasil  penelitian  sampel  swab  ambing menunjukkan  sebanyak  38%  (20/52)  sampel
Tabel 2 . Keberadaan E. coli di peternakan sapi perah Enrekang, Sulawesi Selatan
Jenis sampel Jumlah sampel Positif E. coli Persentase positif (%) Swab tangan pemerah 13 7 54 Swab ambing 52 20 38 Susu 52 31 60 Air 13 6 46
Grafik 1 . Resistansi isolat E. coli terhadap antibiotik
AMP: Ampisilin, TE: tetrasiklin, E: eritromisin, C: kloremfenikol, CAZ: ceftazidime, ENR: enrofloksasin,
CN: gentamisin, SXT: trimetoprim-sulfametoksasol.
0 10 20 30 40 50 60 70 80 90 100 AMP CAZ CN ENR E C SXT TE Pers en ta se re sis ta n si (% ) Resistan Intermediet Sensitif
positif E. coli. Keberadaan E. coli pada permukaan ambing dapat diakibatkan adanya kontaminasi pada  saat  sapi  melakukan  urinasi  atau defekasi setelah  dimandikan.  Kulit  ambing  yang mengandung bakteri patogen dari lingkungan dapat  dipengaruhi  oleh  praktik  higiene  di peternakan  [15].  Berdasarkan  hasil  pengamatan, kebersihan kandang belum sepenuhnya terjaga, kondisi lantai kandang yang masih kotor pada saat proses permerahan. Pada saat sapi perah berbaring, ambing dapat menyentuh lantai yang kotor  sehingga  menjadi  sumber  kontaminasi E. coli . Hasil  pengujian E.  coli dari  air  yang digunakan di peternakan untuk membersihkan peralatan dan ambing sapi perah menunjukkan hasil 46% (6/13) sampel positif E. coli. Berdasarkan hasil pengamatan dilapangan, sumber air yang
digunakan  di  peternakan  adalah  air  sumur. Sebagian besar sumur berjarak ≤ 10 meter dari kandang sapi, yang bertujuan untuk memudahkan dalam  pemberian  minum  pada  sapi  dan pembersihan kandang, namun kondisi tersebut menyebabkan E. coli mudah merembes melalui air. Hasil  penelitian  serupa  juga  dilaporkan oleh  Hinthong et  al. [17],  isolat E.  coli dari sampel  air  paling  umum  resistan  terhadap ampisilin dan  karbenisilin,  sedangkan resistansi terhadap ampisilin, karbenisilin, dan sulfame toksazol-trimetoprim  merupakan  pola  yang paling banyak ditemukan pada E.coli dari sampel susu.  Hasil  penelitian  ini  juga  sesuai  dengan hasil penelitian Bouari et al. [18] yang menyatakan bahwa E. coli resistan terhadap tetrasiklin.
Kejadian resistansi isolat E. coli yang berasal dari peternakan sapi perah Enrekang terhadap
Tabel 3 . Pola resistansi isolat E. coli terhadap antibiotik
Pola resistansi terhadap agen antibiotik Jumlah (n) Jenis dan jumlah isolat Persentase MDR 0 0 0 0% 1 14 E (10) 22% AMP (4)
2 14 AMP + C (1) 22%
AMP + E (11) AMP + SXT (1)
TE + E (1) 3 11 AMP + C + SXT (1) 17% AMP + C + CAZ (1)
AMP + E + CAZ (4) AMP + E + SXT (1) AMP + TE + E (2) AMP + E + C (1) TE + E + C (1)
4 13 AMP + C + CAZ + SXT (1) 20% AMP + E + CAZ + SXT (3)
AMP + TE + E + CAZ (6) AMP + TE + C + CAZ (2) AMP + E + C + ENR (1)
5 7 AMP + TE + E + CAZ + SXT (2) 11%
AMP + TE + E + C + CN (1) AMP + TE + E + C + CAZ (1) AMP + TE + E + CAZ + CN (1) AMP + TE + E + ENR + SXT (1) AMP + TE + E + CAZ + ENR (1) 6 4 AMP + E + C + CAZ + CN + SXT (1) 6% AMP + TE + E + C + CAZ + SXT (1) AMP + TE + E + C + CAZ + SXT (2) 7 1 AMP + E + C + CAZ + ENR + CN + SXT (1) 2%
ampisilin dikaitkan dengan pengobatan kasus mastitis pada ternak sapi perah. Ampisilin pada hewan digunakan untuk pengobatan mastitis klinis dan subklinis, pengobatan penyakit akibat infeksi  bakteri  dan  penanganan Mycoplasma pada unggas.
Resistansi E. coli yang cukup tinggi terhadap eritromisin  juga  dilaporkan  pada  penelitian ini. Hal  ini diduga  karena antibiotik  tersebut banyak digunakan dan merupakan antibiotik spektrum  luas.  Seperti  diketahui  bahwa tetrasiklin,  ampisilin,  dan  eritromisin  adalah antibiotik  pilihan  atau  yang  paling  sering digunakan  di  lapangan.  Pada  ternak  unggas, eritromisin  merupakan  salah  satu  antibitoik yang digunakan untuk pengobatan penyakit. Berdasarkan  pengamatan  dilapangan,  lokasi kandang  sapi  perah  di  kawasan  peternakan sapi perah Kec. Cendana, Enrekang, Sulawesi Selatan Sebagian besar berdekatan dengan lokasi kandang  ayam,  sehingga  hal  tersebut  juga dapat  dikaitkan  dengan  isolat E.  coli yang ditemukan  di  peternakan  sapi  perah  resistan terhadap eritromisin karena adanya transmisi gen resistan dari peternakan ayam ke peternakan sapi perah.
Tetrasiklin yang menjadi antibiotik pilihan untuk  mengobati  akut E.  coli mastitis  tidak efektif lagi dan akan memperburuk prognosis jika terus digunakan. E. coli komensal dari sapi perah  yang  sehat  dapat  menjadi  reservoir penting untuk tetrasiklin dan penentu resistansi antimikroba  lainnya.  Pada  manusia,  tetrasiklin umum digunakan pada kasus infeksi saluran kemih,  menurut  Sabir et  al. [19]  sebanyak 69,4% isolat E. coli yang dikoleksi dari pasien dengan infeksi saluran urinari telah mengalami resistansi  terhadap  tetrasiklin.  Resistansi E. coli terhadap antibiotik tetrasiklin dapat berasal dari penggunaan ekstensif pada hewan maupun kontaminasi  silang  antara  susu  dan  tangan manusia saat proses pemerahan.
Hal  menarik  dalam  penelitian  ini  yaitu 22%  isolat E.  coli resistan  terhadap  kloram fenikol,  padahal  sejak  tahun  1982  Indonesia sudah membatasi penggunaan kloramfenikol untuk  pengobatan  ternak  dan  juga  sebagai imbuhan  pakan.  Kloramfenikol  merupakan antibiotik  yang  umum  digunakan  di  rumah sakit  untuk  mengobati  penyakit  pernapasan seperti  pneumonia  pada  manusia  [20].  Hasil pengujian  yang  menunjukkan  isolat E.  coli
resistan  terhadap  kloremfenikol  dikaitkan dengan E.  coli yang  telah  resistan  klorem fenikol  di  manusia  ditransmisikan  ke  sapi perah dan lingkungan sehingga menyebarkan sifat  resistansinya  pada  bakteri  lainnya.  Hal ini  sesuai  dengan  pendapat  Poirel et  al. [21] bahwa E. coli berperan sebagai donor sekaligus penerima  gen  resistan  sehingga E.  coli dianggap  sebagai  salah  satu  tantangan  global baik untuk kesehatan hewan maupun kesehatan masyarakat.
Hasil pengujian resistansi antibiotik juga menunjukkan 34% isolat E. coli resistan terhadap trimetoprim-sulfametoksasol  dan  25%  isolat resistan  terhadap  ceftazidime.  Walaupun persentase resistansinya cukup rendah, adanya isolat E. coli yang ditemukan resistan terhadap trimetoprim-sulfametoksasol dan ceftazidime dapat dikaitkan dengan transmisi gen resistan pada manusia ke lingkungan dan hewan, ataupun diperoleh dari sumber-sumber lainnya.
Antibiotik  enrofloksasin  dan  gentamisin mempunyai  tingkat  resistansi  yang  cukup rendah. Hal tersebut terjadi karena penggunaan antibiotik  tersebut  masih  jarang  di  peternakan. Nama dagang gentamisin yang cukup banyak dan  jarang  digunakan  karena  hanya  untuk pengobatan infeksi bakteri gram negatif.
MDR  merupakan  kejadian  resistansi terhadap dua atau lebih obat maupun klasifikasi obat  [16].  Pada  penelitian  ini  menunjukkan pola resistansi MDR hingga 7 jenis antibiotik sekaligus  yaitu  trimetoprim-sulfametoksasol, ceftazidime, kloremfenikol, enrofloksasin, dan gentamisin.  Banyaknya  jenis  antibiotik  yang telah digunakan di peternakan dapat ditandai dengan  kejadian  MDR  pada E.  coli .  MDR menyebabkan  penurunan  kesehatan  ternak, penurunan  kualitas  hasil  ternak,  meningkatnya penyakit karena sulit untuk mengobati penyakit akibat  meningkatnya  bakteri  patogen  yang resistan, serta masalah kesehatan manusia.
Berbagai faktor risiko kemunculan resistansi antibiotik  seperti  penggunaan  antibiotik  untuk pencegahan maupun pengobatan penyakit yang kurang  tepat  pada  hewan  maupun  manusia. Peningkatan  strain  bakteri  resistan  antibiotik menimbulkan dampak lain yang tidak diharapkan serta pengobatan yang tidak efektif. Pencegahan penyebaran E.  coli resistan  antibiotik  di lingkungan dapat dilakukan dengan peningkatan biosekuritas pada peternakan sapi perah [22].
Milawarni et al. (2022) Livest. Anim. Res. 20(3): 267-274

## KESIMPULAN
Simpulan penelitian ini isolat E. coli yang diisolasi dari sampel swab tangan pemerah, swab ambing, susu dan air di peternakan sapi perah Kec. Cendana, Enrekang, memberikan gambaran adanya resistansi terhadap beberapa  antibiotik. Isolat E. coli telah resistan terhadap eritromisin dan ampisilin masing-masing sebanyak 78%
(50/64),  trimetoprim-sulfame  toksasol  34,4%
(22/64), tetrasiklin 31% (20/64), ceftazidime 25%
(16/64), kloremfenikol 22% (14/64), enrofloksasin
9,4%  (6/64),  dan  genta  misin 4,6% (3/64).  Pola resistansi E. coli terhadap antibiotik menunjukkan isolat E. coli MDR hingga 7 antibiotik sekaligus. Hasil penelitian ini dapat menjadi data awal untuk penelitian selanjutnya tentang keterkaitan  pola resistansi pada manusia, hewan, dan lingkungan.

## KONFLIK DAN KEPENTINGAN
Kami tidak memiliki konflik kepentingan untuk dideklarasikan.

## UCAPAN TERIMAKASIH
Kami berucap terima kasih atas tenaga serta keahlian kepada para reviewer, bantuan dari beberapa pihak yaitu kepada Dinas Peternakan dan Perikanan Kab. Enrekang dan Balai Besar Veteriner Maros.

## DAFTAR PUSTAKA
1. Karlowsky, A. J., K. B. Samuel, B. C. Amina, S.  Nabila,  Z.  Khalid,  M.  Naglaa,  A.  Taha, and F. S. Daniel. Antimicrobial susceptibility testing of clinical isolates of Gram-negative bacilli collected in Morocco by the ATLAS Global Surveillance Program from 2018 to 2020. J. Glob. Antimicrob. Resist. 30:23-30.
2. O’Neill, J. 2016. Global burden of bacterial antimicrobial resistance in 2019. a systematic analysis.  Arch.  Pharm.  Prac.t  7(3):110.  Doi: 10.4103/2045-080x.186181
3. Blaak,  H.,  A.  H.  A.  M.  van  Hoek,  R.  A. Hamidjaja, R. Q. J. van der Plaats, L. Kerkhof- de Heer, A. M. de Roda Husman, and F. M. Schets.  2015.  Distribution,  numbers, and diversity  of  ESBL-producing E.  coli in  the poultry farm environment. PloS one. 10(8):
1-23. Doi: 10.1371/journal.pone.013 5402
4. Frieri, M., K. Kumar, and A. Boutin. 2017.
Antibiotic  resistance.  J.  Infect.  and  Public Health. 10(4):369 – 378. Doi:10.1016/j.jiph.20
16.08.007
5. Calvina, E. L. E, F. Z. Tomas, O. S. U. G John, Y. C. Hafizah, S. S. Gunnar, H. Bjørg, Y. E. Sabiha, and S. Arnfinn. 2021. High prevalence of multidrug resistant ESBL- and plasmid mediated  AmpC-producing  clinical  isolates of Escherichia coli at Maputo Central Hospital,
Mozambique. BMC Infect. Dis. 21(6). Doi: 10. 1186/s12879-020-05696-y
6. Álvarez-Fernández, E., A. Cancelo, C. Díaz- Vega, R. Capita, and C. Alonso-Calleja. 2013. Antimicrobial  resistance  in E.  coli isolates from  conventionally  and  organically  reared poultry:  A  comparison  of  agar  11  disc diffusion  and  Sensi  Test  Gram-negative methods. Food Control. 30(1):227-234. Doi: 10.1016/j.foodcont.2012.06.005
7. Economou, V. dan P. Gousia. 2015. Agriculture and food animals as a source of antimicrobial- resistant bacteria. Infect. Drug Resist. 8(5):49- 61. Doi: 0.2147/IDR.S55778
8. Aidara-Kane,  A.,  A.  Andremont,  and  P. Collignon.  2013.  Antimicrobial  resistance in the food chain and the AGISAR initiative. J. Infect. and Public Health. 6(3):162-165. Doi: 10.10 16/j.jiph .2013 .04.001
9. Loncaric, I., G. L. Stalder, K. Mehinagic, R. Rosengarten,  F.  Hoelzl,  F.  Knauer,  and  C.
Walzer.  2013.  Comparison  of  ESBL – and AmpC  producing Enterobacteriaceae and Methicillin-Resistant  Staphylococcus  aureus (MRSA) isolated from migratory and resident population  of  rooks  ( Corvus  frugilegus )  in Austria. PLoS One. 8(12):e84048. Doi: 10.1371/ journal. Pone. 0084048
10. Rather, I. A., B. C. Kim, V. K. Bajpai, and Y. H. Park. 2017. Self medication and antibiotic resistance:  crisis,  current  challenges,  and prevention.  Saudi  J.  Biol.  Sci.  24:808-812. Doi: 10.1016/j.sjbs. 2017.01.004
11. Hoang,  M.  D.,  M.  S.  Hoang,  K.  I.  Honjoh, and  T.  Miyamoto.  2016.  Isolation  and  bio- control of Extended Spectrum Beta-Lactamase
(ESBL)-
producing Escherichia coli contamination in raw chicken meat by using lytic bacterio phages. Food Sci. and Technol. 71:339-346. Doi:10.1016/j.lwt.2016.04.013
12. [CLSI]  Clinical  and  Laboratory  Standards Institute.  2020.  Performance  standards  for
antimicrobial  susceptibility  testing ; .  CLSI document M100, 30 th edition. Wayne: Clinical and Laboratory Standards Institute.
13. Welde, N., A. F. Fufa, and W. B. Bihonegn. 2020. Isolation, identification and antimicrobial susceptibility  profiles  of E.  coli O157:  H7 from  raw  cow  milk  in  and  around  Modjo Town,  Ethiopia.  J.  Am.  Sci.  16(6):62-79.  Doi: 10.7537/marsjas160620.08
14. Navab-Daneshmand, T., M. N. D. Friedrich, Gächter, M. C. Montealegre, L. S. Mlambo, T. Nhiwatiwa, M. Hans-Joachim, and T. R.
Julian.  2018. Escherichia  coli contamination across multiple environmental compartments (soil, hands, drinking water, and handwashing water)  in  Urban  Harare:  Correlations  and Risk  Factors.  The  Am.  J.  Trop.  Med.  and
Hyg. 98(3):1-23. Doi: 10.4269/ajtmh.17-0521
15. Van, D. D., E. Cober, and S. Richter. 2014. Tigecycline therapy for carbapenem-resistant Klebsiella pneumoniae (CRKP) bacteriuria leads to tigecycline resistance. Clin. Microbiol. Infect. 5(2):556-776. Doi: 10.1111/1469-0691.12714
16. Calvina, E. L. E., F. Z. Tomas, O. S. U. G. John, Y. C. Hafizah, S. S. Gunnar, B. Haldorsen, Y.  E.  Sabiha,  and  S.  Arnfinn.  2021.  High prevalence of multidrug resistant ESBL- and plasmid mediated AmpC-producing clinical isolates of Escherichia coli at Maputo Central Hospital,  Mozambique.  BMC  Infect.  Dis. 21(6). Doi: 10.1186/s12879-020-05696-y
17. Hinthong,  W.,  P.  Natapol,  S.  Sirijan,  K. Suphang,  B.  Shutipen,  S.  Nitat, C.A. Wanpen, and I. Nitaya. 2017. Detection and drug resistance profile of Escherichia coli from subclinical mastitis cows and water supply
in dairy farms in Saraburi Province, Thailand. Peer J. 5:e3431. Doi: 10.7717/peerj.3431 18. Bouari,  C.,  G.  C.  Nadas,  F.  Chirila,  S. Rapuntean, C. Catoi, F. A. Tabaran, A. Gal, M. Taulescu, and N. I. Fit. 2016. Prevalence and antimicrobial susceptibility profiles of pathogen isolated from bovine mastitis milk in Transylvania, Romania. Frontier Veterinary Science.  73(2):329-333.  Doi:  10.15835/buas vmcn-vm:12199
19. Sabir,  S.,  A.  A.  Aftab,  I.  Tayyaba,  A.  A. Muhammad,  R.  K.  Mutiur,  and  N.
Muhammad. 2014. Isolation and antibiotic susceptibility  of E.  coli from  urinary  tract infections  in  a  tertiary  care  hospital. Pakistan  J.  Med.  Sci.  30(2):389-392.  Doi:
10.12669/pjms.302.4289
20. Nitzan, M. O’Elias, B. Chazan, and W. Saliba. 2015. Urinary tract infections inpatients with type 2 diabetes mellitus: review of prevalence, diagnosis, and management Orna. Diabetes, Metabolic Syndr. Obesity Target Ter. 8:129 -136. Doi: 10.2147/DMSO. S51792
21. Poirel, L., Y.  M.  Jean,  L.  Agnese, Anne-
Kathrin,  N.  K.  Schink,  N.  Patrice, and  S. Stefan.  2018.  Antimicrobial  Resistance  in Escherichia  coli. Microbiol Spectrum.
6(4):1-27. Doi: 10.1128/microbiolspec.ARB A-0026- 2017
22. Sudarwanto, M. B., D. W. Lukman, H. Latif, H. Pisestyani, E. Sukmawinata, O. Akineden, and  E.  Usleber.  2016.  CTX-  M  producing Escherichia  coli isolated  from  cattle  feses  in Bogor  Slaughterhouse,  Indonesia.  Asian  Pac.
Trop. Biomed. 6(7):605-608. Doi: 10.1016/j.apjtb. 2016.05.001