http://journal.ipb.ac.id/index.php/jurnalikt
e-ISSN         : 2620-309X

## PENGARUH PEMBERIAN OVAPRIM DAN HUMAN CHORIONIC
GONADOTROPIN (hCG) TERHADAP PEMIJAHAN SIPUT GONGGONG Laevistrombus turturella
EFFECT OF OVAPRIM AND HUMAN CHORIONIC GONADOTROPIN (hCG) ADMINISTRATION ON GONGGONG CONCH Laevistrombus turturella SPAWNING
Muzahar 1* , Wiwin Kusuma Atmaja Putra 1 , Aminatul Zahra 1 , & Lily Viruly 2 1 Program Studi Budidaya Perairan, FIKP-UMRAH, Tanjungpinang, 29115, Indonesia
2 Program Studi Teknologi Hasil Perikanan, FIKP-UMRAH, Tanjungpinang, 29115, Indonesia
* E-mail: mzet.oke@gmail.com

## ABSTRACT
The  success  of  spawning  determines  the  availability  of  gonggong  conch  seeds.  The  purpose  of  this study  was  to  analyze  the  effectiveness  of  different  types  of  hormones  namely  ovaprim®  and  hCG  in stimulating the spawning of gonggong conch. Eighty-four pairs of broodstock were injected according to  the  design  with  ovaprim®  or  hCG,  or  combination  of  both  hormones  at  a  dose  of  0.5  µL/g  BW. Post-injection  broodstock  are  spawned  in  an  aquarium  with  a  density  of  7  pairs  per  aquarium.  The observed  parameters  were  the  number  of  spawned  broodstocks,  the  number  of  released  eggs,  the latency  time,  and  the  histological  of  the  broodstock  gonads.  The  Kruskal  Wallis  test  was  used  to analyze the number of spawned broodstock, and the analysis of variace (ANOVA) was used to analyze the number of released eggs. The results showed that there was no significant differences between the treatments (P>0.05) on the number of spawned broodstocks, but hCG administration gave the highest number  of  spawned  broodstocks  (52.38%).  The latency  time  of  broodstock  spawned  generally  began on the 2nd and 3rd day after 0.5 µL/g BW ovaprim administration. Based on the percentage of spawned broodstock and the value of all observation parameters, it was concluded that the hCG with a dose of 0.5 µL/g BW (P1) gives a better response than the other treatments.
Keywords: gonggong conch, hCG, Laevistrombus turturella, ovaprim®, spawning

## ABSTRAK
Keberhasilan pemijahan menentukan ketersediaan benih siput gonggong. Tujuan penelitian ini adalah menganalisis  efektivitas  penggunaan  jenis  hormon  berbeda  yaitu  ovaprim®  dan  hCG  dalam menstimulasi pemijahan siput gonggong. Delapanpuluh empat pasang induk disuntik sesuai rancangan dengan  ovaprim®  atau  hCG,  atau  kombinasi  keduanya  masing-masing  dengan  dosis  0,5  µL/g  BB. Induk pascasuntik dipijahkan dalam akuarium dengan densitas 7 pasang per akuarium . Parameter yang diamati  adalah:  jumlah  induk  yang  memijah,  jumlah  telur  dikeluarkan  oleh  induk,  waktu  latensi,  dan tampilan  histologi  gonad induk. Uji Kruskal Wallis digunakan untuk  menganalisis  data jumlah induk mijah,  dan analysis  of  variance (ANOVA)  untuk  menganalisis  jumlah  telur  dikeluarkan  oleh  induk siput.  Hasil  penelitian  menunjukkan  tidak  ada  perbedaan  signifikan  (P>0,05)  jumlah  induk  mijah  di antara  perlakuan,  namun  pemberian  hCG  memberikan  jumlah  induk  mijah  paling  tinggi  (52,38%). Waktu  latensi  induk  mijah  umumnya  mulai  mijah  pada  hari  ke-2  dan  ke-3  setelah  pemberian  0,5 µL/gBB  ovaprim.  Berdasarkan  persentase  induk  mijah  dan  nilai  seluruh  parameter  pengamatan disimpulkan bahwa pemberian suntikan hCG dosis  0,5 µL/g BB (P1) memberikan respons lebih baik dibanding perlakuan lain.
Kata kunci: hCG, Laevistrombus turturella, ovaprim®, pemijahan, siput gonggong.

## I. PENDAHULUAN
Siput  gonggong  ( L.  turturella )  me- rupakan  siput  laut  dari  Famili  Strombidae yang  paling  banyak  dieksploitasi  dan  di- konsumsi  oleh  masyarakat  kota  Tanjung- pinang  karena  citarasanya  yang  lezat  dan mengandung protein tinggi 46,65% (Muzahar  &  Viruly,  2014).  Cangkang  siput gonggong dimanfaatkan sebagai bahan kera- jinan  tangan  ( souvenir ) seperti  bunga,  bros dan  gantungan  kunci  yang  harganya  cukup terjangkau.  Siput  ini  memiliki  lima  varian morfologi,  namun  yang  paling  banyak  disa- jikan  sebagai  lauk  pauk  adalah  yang  ber- cangkang  tebal  (Muzahar et  al .,  2018; Muzahar  &  Viruly,  2014).  Siput  gonggong kebanyakan hidup di habitat lumpur berpasir atau pasir berlumpur dan sedikit yang hidup di  habitat  pasir.  Sentra  penangkapan  siput gonggong antara lain adalah di perairan  laut Pulau  Bintan  (di  daerah  Madong,  Tanjung Sebauk,  Senggarang,  Kelam  Pagi,  Batu Licin, Desa Busung, Lobam dan Tembeling),  Pulau  Dompak,  Penyengat  dan Pengujan.  Kemungkinan  populasi  siput  ini di  alam  telah  mengalami  tangkap  lebih untuk  memenuhi permintaan pasar sehingga terjadi  penurunan.  Ukuran  dan  jumlah  siput gonggong  hasil  tangkapan  yang  diperoleh para  nelayan  semakin  kecil  (Muzahar  & Hakim, 2018). Overexploitation pada  keong Strombus  canarium telah  terjadi  di  Selat Johor, Malaysia (Cob et al ., 2008). Kegiatan budi  daya  dapat  meningkatkan  produksi gonggong  dan  melestarikan  populasinya  di alam.  Produksi  budi  daya  dapat  memper- baiki  populasi  siput  gonggong  melalui re- stocking dan  dapat  mengurangi  penang- kapan  di  alam.  Titik  awal  dan  kunci  sukses dalam  usaha  budi  daya  perikanan  adalah pembenihan  (Afriani,  2016).  Pembenihan adalah salah satu kegiatan utama dalam  budi daya  siput  gonggong.  Keberhasilan  pembe- nihan  sangat  dipengaruhi  oleh  keberhasilan pemijahan induk siput gonggong.
Kendala  utama  pembenihan  siput gonggong  adalah  masih  rendahnya  tingkat
pemijahan  induk  dan  tingkat  kelangsungan hidup  ( survival  rate ,  SR)  larva  di  wadah budi daya (Muzahar et al ., 2019), disamping itu  sumber  induk  matang  gonad  masih  me- ngandalkan  penangkapan  dari  alam.  Salah satu  cara  yang  paling  efektif  dalam  mensti- mulasi  pemijahan  organisme  akuatik  adalah melalui  manipulasi  hormonal  (Yudha et  al ., 2017).  Proses  reproduksi  siput  laut Thais clavigera dan kerang Sinonovacula constricta dikendalikan  oleh  hormon  (Lu et al .,  2001;  Yan et  al .,  2011).  Pemijahan kerang Placopecten  magellanicus berhasil diinduksi  dengan  pemberian  hormon  testos- teron  dan  17β-estradiol  (Wang  &  Croll, 2006).
Ovaprim®, human chorionic gonadotropin (hCG), atau kombinasi kedua- nya  luas  digunakan  dalam  memicu  pe- mijahan  ikan.  Penggunaan  hCG  dengan dosis  250  IU/kg  bobot  tubuh  (BB)  mampu menstimulasi  pemijahan  ikan  bawal  bintang ( Trachinotus  blochii )  (Mulah et  al .,  2017; Putra et al ., 2018), ikan tengadak ( Barbonymus schwanenfeldii ) (Dewantoro et al .,  2017),  serta  ikan  lele  dumbo  ( Clarias gariepinus )  (Sinjal,  2014).  Penggunaan kombinasi  ovaprim®  dosis  0,7  mL/kg  dan hCG  dosis  500  IU/kg  memberikan  respons pemijahan  terbaik  pada  ikan  agamysis ( Agamyxis  albomaculatus )  (Nur et  al ., 2017).  Pemberian  ovaprim®  pada  siput  ini tercatat  baru  satu  penelitian,  yaitu  dengan dosis  rendah  0,5  μL/g  bobot  tubuh  lunak (BB)  menghasilkan  induk  betina  yang  me- mijah  lebih  banyak  daripada  dosis  0,7  μL/g BB  dan  0,9  μL/g  BB,  berturut-turut  sebesar 34,48%,  27,59%  dan  20,69%  (Muzahar et al .,  2019).  Penelitian  tentang  pemberian hCG,  dan  kombinasi  dengan  ovaprim® untuk  memicu  pemijahan  siput  gonggong tidak  pernah  dilaporkan  sehingga  sehingga perlu dikaji.
Tujuan  penelitian  ini  adalah  untuk menganalisis  (1)  jenis  hormon  yang  lebih efektif  dalam  menginduksi  pemijahan  siput gonggong  ditinjau  dari  jumlah  induk  mijah dan  waktu  latensinya,  (2)  jumlah  telur  yang
dikeluarkan  oleh  siput  gonggong,  dan  (3) perbedaan  profil  histologis  gonad  induk yang mijah dan tidak mijah.

## II. METODE  PENELITIAN

## 2.1. Waktu dan Lokasi Penelitian
Penelitian  ini  telah  dilaksanakan pada  bulan  Maret-Juli  2020  di Marine Aquaculture Laboratory dan Marine Biology Laboratory ,  Universitas  Maritim  Raja  Ali Haji,  Tanjungpinang.  Induk  siput  gonggong yang  digunakan  berasal  dari  tangkapan  dari empat  titik  sampel  di  laut  Madong-Kota Tanjungpinang  seperti  disajikan  pada Table 1 .  Tipe  substrat  di  lokasi  ini  umumnya adalah  lumpur  berpasir  dengan  vegetasi lamun  dengan  kepadatan  sedang  (Muzahar et al ., 2019). Preparat histologi gonad  induk siput dikerjakan oleh Laboratorium Kesehatan  Ikan,  Departemen  Budidaya Perairan FPIK-IPB University.

## 2.2. Rancangan Percobaan
Rancangan  penelitian  yang  diguna- kan  adalah  rancangan  acak  lengkap  (RAL) dengan  empat  perlakuan  dan  tiga  ulangan. Jumlah siput uji yang dipakai berjumlah 168 ekor  (84  pasang).  Dosis  dan  volume  larutan hormon  per  gram  bobot  badan  lunak  (BB) yang  disuntikkan  pada  siput  gonggong  ber- pedoman  pada  Muzahar et  al .  (2019)  yaitu 0,5  µL/g  BB.  Bobot  badan  lunak  rata-rata siput  gonggong  adalah  10,7±3,4  g/ekor (betina) dan 8,1±2,3 g/ekor (jantan). Volume hormon disuntikkan pada induk adalah hasil
perkalian dosis yang diberikan dengan bobot badan lunak rata-rata siput gonggong seperti ditampilkan  pada Table  2 .  Wadah  yang  di- pakai  adalah  dua  belas  buah  akuarium masing-masing berukuran (80×40×50) cm³.
Table 1.  The  coordinates  of  the  gonggong conch sampling area.
No. The coordinate Information 1 104°26'2.714"BT 0°58'58.563"LS Location 1 2 104°26'8.025"BT 0°58'55.907"LS Location 2 3 104°26'12.565"BT 0°58'56.507"LS Location 3 4 104°26'16.42"BT 0°58'59.762"LS Location 4

## 2.3. Penyiapan Wadah Pemeliharaan
Seluruh  akuarium  untuk  wadah pemeliharaan  induk  pascasuntikan  dibersih- kan dan dipasang seperangkat aerator. Sedi- men  lumpur  sebagai  pakan  untuk  induk diambil  dari  habitat  alami  siput  gonggong diletakkan  di  dasar  semua  akuarium  sampai ketinggian 10 cm. Air dimasukkan ke dalam semua  akuarium  sampai  ketinggian  45  cm, dan  kemudian  aerator  diaktifkan  (Muzahar & Hakim, 2018).
2.4. Penyiapan Siput Uji, Ovaprim® dan hCG, dan Teknik Pemijahan Siput gonggong uji memiliki panjang cangkang  >67  mm  (betina)  dan  >64  mm (jantan) dan bobot badan lunak tanpa cang-
Table 2. Treatments, injection volume of hCG hormone and ovaprim®.
Treatments Volume of injection (µL/ekor) on female broodstock Volume of injection (µL/ekor) on male broodstock Dosage of 0.5 IU/g BB hCG (P1) 5.35 4.05 Dosage of 0.5 µL/g BB ovarim® (P2) 5.35 4.05 Dosage  of  0.25  IU/g  BB  hCG  +  0.25  µL/g BB ovaprim® (P3) 5.35 4.05 Dosage  of  0.5  µL/g  BB  physiological solution NaCl (P4) 5.35 4.05
kang  (BB)  10,7±3,4  g/ekor  (betina)  dan 8,1±2,3  g/ekor  (jantan)  sesuai  kriteria Muzahar et  al .  (2019).  Induk  siput  sebelum perlakuan  diaklimatisasi  dalam  air  laut  ber- salinitas 30 ppt dalam bak fiber berkapasitas 1ton  selama  48  jam.  Induk  selama  aklima- tisasi  diberi  pakan  berupa  sedimen  lumpur yang diambil dari habitat alaminya. Ovaprim® yang digunakan produksi Syndel-India,  dan  hCG  merek  Chorulon TM produksi MSD-Netherland.
Semua  induk  siput  gonggong  betina diberi  suntikan  larutan  sesuai  dosis  seperti terlihat  pada Table  1 ,  sedangkan  semua induk  jantan  diberi  suntikan  ovaprim® sebanyak  4,05  µL/ekor.  Jarum  suntik  ber- ukuran  0,60x32  mm  (23G×1¼”)  digunakan untuk  memasukkan  larutan  hormon  pada bagian  otot  kaki  siput  (Muzahar et  al ., 2019).  Induk  pascasuntik  dipelihara  dalam akuarium dengan densitas 7 pasang/ akuarium selama 13 hari . Induk siput selama masa  perlakuan  pemijahan  diberi  pakan berupa  sedimen  lumpur.  Penambahan  air dalam  akuarium  hanya  dilakukan  untuk mengganti air yang menguap.

## 2.5. Parameter Uji dan Analisis Data
Parameter  yang  diamati  terdiri  atas (1)  jumlah  induk  yang  memijah,  (2)  jumlah telur dikeluarkan oleh masing-masing induk, (3)  waktu  latensi,  dan  (4)  histologi  gonad siput  gonggong  yang  memijah  dan  tidak mijah.  Telur  yang  dikeluarkan  oleh  induk diambil  sejumlah  tertentu  secara  acak kemudian  ditimbang  dan  dihitung.  Uji Kruskal  Wallis  digunakan  untuk  meng- analisis  jumlah  induk  yang  memijah  dan analysis  of  variance (ANOVA)  untuk menganalisis  data  jumlah  telur  yang  di- keluarkan  oleh  induk  siput  gonggong,  dan bila  terdapat  perbedaan  nyata  dilanjutkan dengan  uji  Duncan.  Data  waktu  latensi induk  dan  analisis  histologi  gonad  induk siput  gonggong  perlakuan  dianalisis  dan disajikan  secara  deskriptif.  Analisis  data secara  statistik  dilakukan  dengan  bantuan software SPSS versi 16.

## III. HASIL DAN PEMBAHASAN
3.1. Hasil dan Pembahasan
3.1.1.   Jumlah Induk Mijah, Jumlah Telur Dikeluarkan dan Waktu Latensi
Persentase jumlah induk siput gonggong  betina  yang  memijah  dan  waktu latensinya  disajikan  pada Figure  1 ,  serta jumlah  rata-rata  telur  yang  dikeluarkan (fekunditas) ditampilkan pada Figure 2 . Induk  siput  gonggong  betina  dite- mukan  pertama  kali  memijah  ( latency  time tercepat)  pada  hari  ke-2  pengamatan  yaitu pada  perlakuan  suntikan  0,5  µL/g  BB ovaprim  (P2)  dan  terakhir  pada  hari  ke-13 pada  perlakuan  suntikan  0,5  µL/g  BB  hCG (P1).  Waktu  latensi  pada  semua  induk perlakuan  beragam,  namun  umumnya  induk memijah  pada  hari  ke-2  dan  ke-3.  Waktu latensi  tercepat  pada  perlakuan  pemberian suntikan  0,5  µL/g  BB  ovaprim  (P2)  yang diperoleh  pada  penelitian  ini  sama  dengan hasil  Muzahar et  al .  (2019)  yang  mem- berikan  jenis,  dosis  hormon  serta  spesies hewan  uji  yang  sama  yaitu  pada  hari  ke-2. Waktu  latensi  ini  jauh  lebih  lambat  di- bandingkan  dengan  golongan  ikan  ( finfish ), seperti  ikan  gurami Ospronemous  gouramy dan  ikan  tengadak B.  schwanenfeldii yang diberi  perlakuan  dosis  dan  jenis  hormon sama  yaitu  hanya  8-13  jam  (Dewantoro et al .,  2017).  Jumlah  induk  yang  memijah terbanyak  adalah  pada  perlakuan  suntikan 0,5  µL/g  BB  hCG  (P1)  yaitu  11  ekor (52,38%), dan paling sedikit pada perlakuan suntikan  0,5  µL/g  BB  kombinasi  hCG  dan ovaprim  (P3)  yaitu  3  ekor  (14,29%). Pemakaian  ovaprim  dan  hCG  untuk  men- stimulasi  pemijahan  golongan  gastropoda masih  sangat  sedikit  dilakukan.  Mekanisme kerja  hormon  hCG  dan  ovaprim  yang  di- injeksikan  pada  siput  gonggong  masih belum  diketahui.  Hal  ini  selaras  dengan pendapat  Appeldoorn  (1995),  bahwa  hanya sedikit  yang  dipahami  tentang  kontrol hormonal  dan  sistem  endokrin  dalam  repro- duksi gastropoda. Pemberian ovaprim pada
Figure 1. Percentage of female gonggong broodstock spawned (a) and its latency time (b).
Figure 2. Average of eggs released (grain/head broodstock) on each treatments.
ikan finfish berbeda  pengaruhnya  dengan golongan  gastropoda.  Ovaprim  yang  diberi- kan  pada  ikan  meningkatkan  efektifitas luteinizing  hormone  releasing  hormone (LHRH)  pada  ikan  karena  sekresi  hormon gonadotropin  pada  ikan  berada  di  bawah kontrol  ganda  antara  LHRH  dan  anti- dopamin  (Zairin  Jr.,  2003)  sehingga  men- stimulasi pemijahan ikan.
Jumlah  rata-rata  induk  betina  mijah secara  keseluruhan  adalah  33,33%.  Per- bedaan  persentase  jumlah  induk  yang memijah  berdasarkan  uji  Kruskal  Wallis menunjukkan  hasil  tidak  berbeda  nyata  di antara perlakuan (P>0,05), namun perlakuan suntikan  0,5  µL/g  BB  hormon  hCG  (P1) memiliki  persentase  induk  betina  mijah paling  besar  yaitu  52,38%.  Perbedaan  per- sentase  ini  disebabkan  oleh  perbedaan tingkat kematangan gonad induk dan adanya beberapa  induk  yang  tidak  matang  gonad sebagaimana  hasil  analisis  histologi  pada sampel  gonad  induk  ( Figure 3a ).  Adanya beberapa  induk  yang  tidak  matang  gonad yang  digunakan  dalam  penelitian  ini  di- sebabkan  oleh  sulitnya  memastikan  tingkat kematangan gonad. Kesulitan ini disebabkan posisi  gonad  gonggong  berada  di  bagian dalam  ujung  cangkang  mulai  dari apeks sampai  kira-kira  sepertiga  cangkang  se- hingga  tidak  dapat  dilihat  dari  luar.  Teknik penentuan  induk  matang  gonad  yang  ada saat  ini  hanya  berdasarkan  panjang  cang- kang total. Oleh karena itu, penemuan teknik baru  dalam  menentukan  kematangan  gonad gonggong  perlu  dikembangkan.  Persentase induk  mijah  tersebut  (0,5  µL/g  BB  hormon hCG, P1), dan perlakuan dosis 0,5 µL/g  BB ovaprim  (42,62%)  pada  penelitian  ini  mem- perlihatkan  persentase  hasil  yang  jauh  lebih tinggi dibanding hasil Muzahar et al . (2019) yang hanya sebesar 34,48%. Perlakuan pem- berian  suntikan  0,5  µL/g  BB  hormon  hCG (P1) pada penelitian ini memberikan respons lebih  baik  untuk  menstimulasi  pemijahan induk  siput  gonggong  betina  berdasarkan persentase  induk  yang  memijah  (52,38%). Hasil  ini  berbeda  dengan  kesimpulan  dari
Nur et  al .  (2017)  yang  memberikan  perla- kuan  jenis  hormon  yang  sama  pada finfish ikan  agamysis  ( Agamyxis albomaculatus ) yaitu bahwa  penggunaan kombinasi  hormon hCG  dosis  500  IU/kg+ovaprim  dosis  0,7 mL/kg  memberikan  respons  terbaik  di- banding  penggunaan  hormon  tunggal  hCG atau ovaprim  saja.  Faktor  yang  ikut  menen- tukan  keberhasilan  pemijahan  gastropoda adalah  musim.  Produksi  dan  biomas  siput Strombus canarium lebih tinggi pada musim hujan  dibanding  musim  kemarau,  dimulai bulan  Nopember  sampai  bulan  Maret  (Cob, 2008),  dan  lama  penyinaran  (foto  periode- sitas) (Cala et al . 2012).
Jumlah  telur  yang  dikeluarkan  oleh masing-masing  induk  betina  berbeda-beda pada  semua  perlakuan.  Jumlah  rata-rata tertinggi  telur  yang  dikeluarkan  oleh  induk betina  terdapat  pada  perlakuan  suntikan  0,5 µL/g  BB  kombinasi  hormon  hCG  dan ovaprim  (P3)  yaitu  60.806±32.539  butir/ ekor,  dan  terendah  pada  perlakuan  suntikan 0,5 µL/g BB NaCl (P4) yaitu 29.179±25.160 butir/ekor.  Jumlah  rata-rata  secara  keselu- ruhan telur yang dikeluarkan sebesar 38.852 butir/ekor.  Jumlah  rata-rata telur  yang  dike- luarkan  oleh  induk  betina  siput  gonggong berdasarkan analysis of variance (ANOVA) tidak  berbeda  nyata  di  antara  perlakuan (P>0,05).  Hasil  ini  disebabkan  oleh  jumlah telur  yang  dikeluarkan  oleh  masing-masing induk  pada  semua  perlakuan  sangat  ber- variasi  dengan  selisih  yang  besar  antara jumlah  terkecil  dan  terbesar.  Faktor  pe- nyebab  lainnya  adalah  perkembangan  sel telur  pada  gonad  betina  pada  ketiga  per- lakuan  tidak  seragam.  Pemberian  suntikan 0,5  µL/g  BB  kombinasi  hormon  hCG  dan ovaprim  (P3)  yang  memberikan  hasil  lebih baik  dalam  penelitian  ini  sejalan  dengan hasil  Nur et  al .  (2017)  pada  golongan  ikan ( finfish ) yaitu secara umum perlakuan peng- gunaan  kombinasi  hCG  500  IU  dengan ovaprim  0,7  mL/kg  bobot  badan  ikan agamysis  menghasilkan  telur  yang  lebih baik  dibanding  dengan  perlakuan  hormon tunggal.  Fungsi  pemberian  hCG  adalah  me-
nyeragamkan tingkat kematangan akhir telur dan  menyiapkan  telur  yang  matang  untuk diovulasikan  sehingga  dapat  menaikkan tingkat  kepekaan  oosit  pada  pada  saat pemberian  ovaprim  (Cacot et  al .,  2002). Jumlah rata-rata telur yang dikeluarkan oleh induk  betina  baik  pada  setiap  perlakuan maupun secara keseluruhan dalam penelitian ini  lebih  rendah  daripada  hasil  Muzahar et al .  (2019)  yaitu  39.347±16.667  butir/ekor. Perbedaan  jumlah  telur  yang  dikeluarkan oleh  masing-masing  induk  disebabkan  per- bedaan  tingkat  kematangan  telur  dalam masing-masing  gonad  induk  betina  ( Figure 3 ).  Telur-telur  matang  secara  keseluruhan akan  dikeluarkan  oleh  induk  betina  secara total  dan  jika  belum  matang  maka  terjadi pemijahan  secara  parsial.  Jumlah  telur  yang dikeluarkan  oleh  beberapa  golongan  siput ketika  memijah  memang  bervariasi,  sebagai bukti  pada  keong dog  conch ( Strombus canarium )  berkisar  antara  48.745±877
sampai 93.643±1.685  butir/ekor (Cob et  al ., 2009),  keong  gonggong  ( S.  turturella )  dari laut  Bangka  sebanyak  75.000-95.000  butir (Dody, 2012), keong queen conch ( S. gigas ) sebesar  400.000  butir/ekor  (Davis,  2005), dan  pada  siput  lola  ( Trochus  niloticus ) antara  3  x  10 5 sampai  dengan  1  x  10 6 butir/ekor  (Pradina  &  Dwiono,  1994). Faktor  lingkungan  hidup  tempat  individu ikan  berada,  kondisi  fisiologis,  umur,  jenis ikan,  kepadatan  populasi,  ukuran  tubuh, makanan,  dan  sifat  ikan  merupakan  pe- nyebab  adanya  variasi  jumlah  telur  yang dikeluarkan  (fekunditas)  ikan  (Yildirim et al. ,  2006).  Beberapa  faktor  penting  di  atas diduga juga berlaku pada siput gonggong.

## 3.1.2.   Profil Histologi Gonad Induk yang Mijah dan Tidak Mijah
Pofil  mikroskopis  histologis  gonad induk  yang  mijah  dan  tidak  mijah  ditampil- kan pada Figure 3 . Histologi gonad induk
Figure 3.  Gonadal  histological  profile  of  broodstock  spawned  (a),  and  gonadal  histological profile of broodstock not spawned (b); *visceral, ** gonadal.
siput  gonggong  perlakuan  yang  memijah menunjukkan  perkembangan  yang  baik, namun  sebagian  kecil  perkembangan  telur- nya tidak seragam terutama pada ujung  luar jaringan  gonad,  sedangkan  pada  induk gonggong  perlakuan  yang  tidak  memijah tampilan  gonadnya  memiliki  telur  yang tidak/sedikit sekali yang berkembang.

## Figure 4. The collection of  gonggong conch spermatozoa  observed  in  famale gonad (yellow arrow).
Profil  perkembangan  gonad  induk- induk  gonggong  perlakuan  baik  yang  me- mijah dan tidak  memijah  yang  beragam ter- sebut  mirip  dengan  yang  terjadi  pada  siput Lambis-lambis  yang  masih  dalam  satu famili  Strombidae.  Tingkat  kematangan gonad siput Lambis diamati terdiri atas TKG I  sampai  TKG  IV  yang  mengindikasikan proses pembentukan dan pematangan gonad serta  pemijahan  yang  terjadi  sepanjang tahun  (Widyastuti  &  Aji,  2016) . Hasil  ini juga  selaras  dengan  temuan  Leimena  & Subahar  (2006)  pada  keong  lola  ( Trochus niloticus )  betina,  yaitu  bahwa  dalam  satu individu  terdapat  beberapa  tahap  perkem- bangan  gonad,  yaitu  oosit  muda,  oosit  yang sedang  berkembang,  dan  oosit  matang. Kondisi  seperti  ini  mengindikasikan  bahwa proses  perkembangan  gonad  keong  lola  ter- jadi  terus  menerus  sehingga  pemijahannya berlangsung  sepanjang  tahun,  dan  keadaan ini diduga juga terjadi pada siput gonggong. Proses  perkembangan  gonad  beberapa  jenis
siput  laut  secara  umum  berlangsung  terus menerus  sepanjang  tahun  seperti  pada  siput laut Turbo torquatus (Ward & Davis, 2002). Proses  pembuahan  sel  telur  oleh  sel sperma  terjadi  di  dalam  tubuh  individu betina  yang  dibuktikan  dengan  ditemukan- nya  sperma  dalam  seluruh  sampel  gonad induk  gonggong  betina  yang  diamati. Sampel  kumpulan  sperma  yang  berhasil diamati dalam gonad induk gonggong betina ditampilkan pada Figure 4 .

## IV. KESIMPULAN
Pemberian  hCG  dosis  0,5  µL/g  BB (P1)  memiliki  persentase  pemijahan  terting- gi  dibanding  perlakuan  lain,  yaitu  52,38%. Jumlah  telur  yang  dikeluarkan  oleh  induk dengan  perlakuan  pemberian  kombinasi hormon  hCG  dan  ovaprim  (P3)  dosis  0,5 µL/g  BB  memiliki  jumlah  telur  terbanyak, yaitu  60.806±32.539  butir/ekor.  Waktu latensi  pada  semua  perlakuan  umumnya  di- mulai  pada  hari  ke-2  dan  ke-3.  Histologi gonad  induk  gonggong  betina  menunjukkan perkembangan  telur  yang  tidak  seragam. Berdasarkan persentase induk yang memijah dan  keseluruhan  para-meter  yang  diamati dapat  disimpulkan  bahwa  pemberian  sun- tikan  hCG  dosis  0,5  µL/g  BB  (P1)  mem- berikan  respons  lebih  baik  dibanding  dua perlakuan lain.

## UCAPAN TERIMA KASIH
Penelitian  ini  didanai  oleh Research Grant Fakultas Ilmu Kelautan dan Perikanan-Universitas Maritim Raja Ali Haji Tahun  2020.  Terima  kasih  disampaikan kepada  Dekan  dan  WD  II  FIKP  UMRAH, Kepala Marine  Aquaculture  Laboratory - BDP,  Kepala Marine  Biology  Laboratory FIKP-UMRAH  atas  bantuan  fasilitas  dan dukungannya  dalam  penelitian  ini,  sahabat- ku  Zulpikar,  S.Pi.,  Hamzah,  Budi  Primulia, M.AP.,  Hary  Wibowo,  M.Ak.,  Agus Muslim,  M.Si.,  Dian  Novitasari,  M.Si., Firdaus, S.Pi., para mahasiswa Rian
Sukamto  dan  Ad  durunnafis  serta  semua pihak  yang  telah  membantu  Penulis  dalam menyelesaikan penelitian dan tulisan ini.

## DAFTAR PUSTAKA
Afriani,  D.T.  2016.  Peranan  pembenihan ikan  dalam  usaha  budidaya  ikan. J. Warta , 49: 1-9.
https://doi.org/10.46576/wdw.v0i49. 158 Appeldoorn, R.S. 1995. Potential depensatory  mechanisms  operating on reproductive output in
gonochoristic molluscs, with
particular  reference  to  strombid gastropods.  ICES  mar.  Sei.  Symp, 199: 13-18 pp.
Cacot,  P.,  M.  Legendre,  T.Q.  Dan,  L.T. Hung, P.T. Liem, C. Mariojouls, & J. Lazard.  2002.  Induced  ovulation  of
Pangasius  bocourti (Sauvage,  1880) with  a  progressive  hCG  treatment.
Aquaculture , 213: 199-206.
Cala,  Y.R.,  A.  de  Jesús-Navarrete,  F.A.
Ocana,  &  J.  Oliva-Rivera.  2013. Density  and  reproduction  of  the queen conch Strombus gigas at Cabo
Cruz, Desembarco del Granma National  Park,  Cuba. J.  Tropical.
Biology, 61(2): 645-655.
https://www.redalyc.org/pdf/449/449 27436014.pdf Cob,  Z.C.,  A.  Arshad,  M.A.  Ghaffar,  J.S. Bujang,  &  W.L.W.  Muda.  2009. Development and growth of larvae of the  dog  conch, Strombus  canarium (Mollusca: Gastropoda), in the laboratory. J.  of  Zoology  Study , 48(1): 1-11. https://citeseerx.ist.psu.edu/viewdoc/
download?doi=10.1.1.598.5147&rep =rep1&type=pdf Cob, Z.C., A. Arshad, M.A. Ghaffar,  & J.S. Bujang.  2008.  Sexual  maturity  and sex determination in Strombus canarium . J.  Biological  Science, 8(3): 616-621.
https://doi.org/10.3923/jbs.2008.616. 621 Dewantoro, E., N.R. Yudhaswara, & Farida. 2017. Pengaruh penyuntikan hormon ovaprim  terhadap  kinerja  pemijahan ikan tengadak. J. Ruaya , 5(2): 1-9. http://doi.org/10.29406/rya.v5i2.715
Dody,  S.  2012.  Pemijahan  dan  perkemba- ngan larva siput gonggong ( Strombus turturella ). J.  Ilmu  dan  Teknologi Kelautan Tropis , 1(4): 107-113.
https://doi.org/10.29244/jitkt.v4i1.78 11 Effendie,  M.I.  2002.  Biologi  Perikanan. Yayasan Pustaka Nusatama. Yogyakarta. 163 p.
Leimena,  H.E.P.  &  S.S.T  Subahar.  2006.
Potensi reproduksi keong lola ( Trochus niloticus ) di Pulau Saparua,
Maluku  Tengah. Hayati ,  13(2):49- 52.
https://doi.org/10.4308/hjb.13.2.49
Lu,  M.,  T.  Horiguchi,  H.  Shiraishi,  Y. Shibata,  M.  Abo,  A.  Okubo,  &  S. Yamazaki.  2001.  Discrepancy  of analytical values of steroid hormones in marine gastropods between GC/MS  and  ELISA. J.  Analytical Sciences , 17:1619-1622. https://doi.org/10.14891/analscisp.17 icas.0.i1619.0
Mulah,  A.,  T.S.  Raza’I,  &  W.K.A.  Putra. 2017.  Efektivitas  penggunaan  hor- mon  human  chorionic  gonadotropin (hCG)  dan  ovaprim  terhadap  waktu latensi  dan  fekunditas  dalam  pemi- jahan ikan bawal bintang ( Trachinotus blochii ). J. Intek Akuakultur , 1(2): 1-6.
https://doi.org/10.31629/intek.v1i2.2
60
Muzahar,  M.  Zairin  Jr.,  F.  Yulianda,  M.A. Suprayudi,  Alimuddin,  &  I.  Effendi. 2019.  Pemijahan  semi-buatan  siput gonggong Laevistrombus  turturella dengan  induksi  kombinasi  hormon LHRH-a  dan  antidopamin. J.  Riset Akuakultur, 14(4): 1-6.
http://doi.org/10.15578/jra.14.4.2019
.225-232
Muzahar,  M.  Zairin  Jr.,  F.  Yulianda,  M.A. Suprayudi,  Alimuddin,  &  I.  Effendi. 2018 The phenotype comparison and genotype  analysis  of  five  Indonesian Laevistrombus sp. variants as a basis of  species  selection  for  aquaculture. AACL Bioflux , 11(4): 1164-1172. http://www.bioflux.com.ro/docs/201 8.1164-1172.pdf Muzahar  &  A.A.  Hakim.  2018.  Spawning and  development  of  dog  conch Strombus sp. larvae in the laboratory.
J.  Ilmu  dan  Teknologi  Kelautan Tropis, 10(1): 209-216. http://doi.org/10.29244/jitkt.v10i1.18 607
Muzahar  &  L.  Viruly.  2013.  Karakterisasi kimia,  sensori  dan  laju  pemijahan gonggong  ( Strombus sp.)  sebagai ikon  Kepulauan  Riau. J.  Dinamika Maritim , 3(2): 20-29.
Nur,  B.,  A.  Permana,  A.  Priyadi,  S.Z. Mustofa  &  S.  Murniasih.  2017.
Induksi  ovulasi  dan  pemijahan  ikan agamysis Agamyxis  albomaculatus menggunakan  hormon  yang berbeda.
J. Riset Akuakultur , 12(2): 169-177.
http://doi.org/10.15578/jra.12.2.2017 .169-177. Pradina & S.A.P Dwiono. 1994.
Karakteristik  fase-fase  perkemba- ngan  ovaria  lola, Trochus  niloticus (Moluska,  Gastropoda). PRM  LIPI ,
8: 15-21. http://doi.org/10.1016/S1978- 3019(16)30380-1
Putra, W.K.A., T.S. Raza’i, R.T. Zulfikar, R. Handrianto,  Zulpikar,  &  Fauzanadi. 2018.  Kajian  pemijahan  ikan  bawal bintang  ( Trachinotus  blochii )  secara induksi  hormonal. Intek  Akuakultur , 2(1): 54-62. https://ojs.umrah.ac.id/index.php/inte k/article/download/540/388/
Sinjal, H. 2014. Efektifitas ovaprim terhadap lama  waktu  pemijahan,  daya  tetas
telur  dan  sintasan  larva  ikan  lele dumbo Clarias  gariepinus . J.  Budi- daya Perairan , 2(1): 14-21. https://doi.org/10.35800/bdp.2.1.201 4.3788
Wang, C. & R.P. Croll. 2006. Effects of sex steroids  on  spawning  in  the  sea scallop, Placopecten  magellanicus .
Aquaculture , 256: 423-432.
https://doi.org/10.1016/j.aquaculture. 2006.01.017
Ward, D.W. & A.R. Davis. 2002. Reproduction  of  the  turban  shell Turbo torquatus Gmelin 1791 (Mollusca:  Gastropoda)  in  New South Wales, Australia. Mar. Freshwater Res., 53: 85-91.
https://doi.org/10.1071/MF00066
Widyastuti,  A.  &  L.P.  Aji.  2016.  Beberapa Aspek  Reproduksi  Siput  Lambis lambis  di  Pesisir  Perairan  Yenusi, Biak. J.  Oseanologi  dan  Limnologi di Indonesia , 1(3): 1-9.
http://doi.org/10.14203/oldi.2016.v1i 3.74 Yildirim,  A.H.I.,  Haliloglu,  O.  Erdogan,  & M. Turkmen. 2006.
Some reproduction characteristics of Chalcalburnus  mossulini (Heckel,
1843)  Inhabiting  the  Karasau  River (Erzurum,  Turkey).  Tubitak. Turk  J.
Zool. , 31(27): 193-200. https://journals.tubitak.gov.tr/zoolog y/issues/zoo-07-31-2/zoo-31-2-15-
0603-2.pdf
Yudha,  H.T.,  A.O.  Sudrajat,  &  Haryanti. 2017.  Pengaruh  rangsangan  hormon aromatase inhibitor dan oodev terhadap  perubahan  kelamin  dan perkembangan  gonad  ikan  kerapu sunu ( Plectropomus leopardus ) . JRA, 12(4): 325-333. http://doi.org/10.15578/jra.12.4.2017 .325-333
Yan, H., Q. Li, W. Liu, Q. Ke, R. Yu,  & L. Kong.  2011.    Seasonal  changes  of oestradiol-17β and testosterone concentrations  in  the  gonad  of  the
razor  clam ( Sinonovacula  constricta ,
Lamarck,  1818). J.  of  Molluscan Studies Advance , 0: 1-7.
https://doi.org/10.1093/mollus/eyq04 5. Zairin  Jr.,  M.  2003.  Endokrinologi  dan perannya bagi  masa  depan  perikanan
Indonesia.  Orasi  ilmiah  guru  besar Institut  Pertanian  Bogor.  Bogor.  70 p.
Received   : 1 August 2020 Reviewed  :  10 October 2020 Accepted  :  10 December 2020