Potensi Minyak Atsiri Kulit Jeruk Nipis Untuk Pengendalian Crocidolomia Pavonana (Nidia Melati Al Anshori, Retno Wijayanti, Ato Sulistyo)

## POTENSI  MINYAK  ATSIRI  KULIT  BUAH  JERUK  NIPIS  UNTUK  PENGENDALIAN CROCIDOLOMIA PAVONANA
Nidia Melati Al Anshori 1) , Retno Wijayanti 2) , Ato Sulistyo 2)
1) Mahasiswa Program Studi Agroteknologi, Fakultas Pertanian Universitas Sebelas Maret Surakarta
2) Dosen Program Studi Agroteknologi, Fakultas Pertanian Universitas Sebelas Maret Surakarta Kontak Penulis: el.anshori.07@gmail.com

## ABSTRACT
Cabbage  head  caterpillar  ( Crocidolomia  pavonana )  is  a  major  pest  on  Brassicaceae.  Control  using  chemical insecticides  to  control  this  pest  can  resistance.  When  used  as  a  lime  peel  essential  oil  is  thought  to  be  cabbage head  caterpillar  pest  control  compounds  that  contain  monoterpene.  This  study  is  conducted  in  August  2016- January  2017.  This  study  used  a  completely  randomized  design  (CRD)  with  one  factor  is  the  concentration  of essential  oil.  Variables  measured  were  Larvicide,  antifeedant,  antioviposition,  and  phytotoxocity.  The  research results showed that essential oil of lime peel cause mortality of larvae of C. pavonana slowly. antifeedant  activity due to the essential oil of less than 50%. Inhibition of egg laying was significant at concentration of 0.2% (73.3%), 0.8% and 1.6% (80%). Essential oil causes necrosis of leaf less than 10%.
Keywords : Larvicide, antifeedant , antioviposition, phytotoxocity

## AGROTECHNOLOGY RESEARCH JOURNAL
Al Anshori NM, Wijayanti R, Sulistyo A. 2017. Potential of lime peel essential oil for contro l Crocidolomia Pavonana. Agrotech Res J 1(2): 19-23. Al  Anshori NM,  Wijayanti  R,  Sulistyo  A.  2017.  Potensi  minyak  atsiri  kulit  jeruk  nipis  untuk  pengendalian Crocidolomia Pavonana . Agrotech Res J 1(2): 19-23.

## PENDAHULUAN
Ulat  kubis  ( Crocidolomia  pavonana (F.)  sinonim Crocidolomia binotalis Zeller) merupakan hama penting bagi  tanaman kubis,  sawi,  dan  brokoli.  Ulat  ini  menjadi masalah  yang  serius  dikarenakan  ulat  memakan  daun yang  masih  muda  serta  menyerang  titik  tumbuh tanaman (Othman 1982). Jika yang terserang tanaman kubis maka tanaman masih bisa hidup sedangkan pada tanaman  sawi  tanaman  tidak  dapat  bertahan  hidup (Pracaya 1999).
Pengendalian  dengan  menggunakan  insektisida kimia  yang  dilakukan  petani  dapat  menyebabkan resistensi  hama C.  pavonana .  Penggunaan  insektisida tidak  baik  karena  dapat  menyebabkan  hama  menjadi resisten  dan  mengganggu  keseimbangan  lingkungan (Asriani et al. 2013). Dono et al. (2010) melaporkan, C. pavonana populasi  Kerta,  Payangan,  Gianyar,  Bali telah  menunjukkan  mekanisme  resistensi  terhadap insektisida profenofos dengan nilai nisbah resistensi >7. Kulit  jeruk  nipis  merupakan  limbah  yang  belum termanfaatkan dengan baik.
Berdasarkan  hal  tersebut,  minyak  atsiri  kulit  jeruk nipis memiliki  kemungkinan yang besar dapat mengendalikan  hama  ulat  kubis.  Kulit  jeruk  nipis  yang didestilasi  mengandung  senyawa  aktif limonene 97,83%  (Moraes  et  al.  2009).  Buah  jeruk  nipis  yang didestilasi  mengandung  senyawa pinene,  camphene, cymene, limonene, ocimene, linalool, fenchol, verbenone,  elemene,  neryl  acetate,  caryophyllene, dan bergamotene (Patil  2009).  Oleh  karena  itu,  evaluasi potensi  kulit  jeruk  nipis  sebagai  larvasida,  A ntifeedant dan repellent perlu  dilakukan  sebagai  alternatif  dalam
pengendalian  hama C. Pavonana. Penelitian  ini bertujuan untuk melihat seberapa besar potensi minyak atsiri  kulit  jeruk  nipis  terhadap  pengendalian  hama  ulat kubis.

## BAHAN DAN METODE PENELITIAN
Penelitian ini dilaksanakan pada bulan Agustus 2016 -  Januari  2017.  Bahan  yang  digunakan  adalah  kulit jeruk nipis, tanaman sawi, media tanam, Tween 80 dan ulat  kubis  ( C.  pavonana ).  Alat  yang  digunakan  adalah petridish, botol kaca, pipet, gelas ukur, toples, kain kasa dan destilator.
Penelitian  ini  menggunakan  Rancangan  Acak Lengkap  (RAL)  dengan  satu  faktor  yaitu  konsentrasi minyak  atsiri  yang  terdiri  atas  7  taraf  dan  setiap konsentrasi  diulang  sebanyak  4  kali.  Pada  setiap perlakuan  pada  uji  larvasida  menggunakan  20  ekor larva  ulat  kubis  dan  uji antifeedant sebanyak  1  ekor. Pada  uji  fitotoksisitas  menggunakan  1  tanaman  sawi dan  pada  uji  antioviposisi  menggunakan  1  tanaman sawidan  sepasang  imago.  Perlakuan  yang  digunakan adalah: M1 = aquadest (kontrol 1), M2 = aquadest dan Tween  80  dengan  perbandingan  9:1  (kontrol  2),  M3  = 0,1% minyak atsiri, M4 = 0,2% minyak atsiri, M5 = 0,4% minyak  atsiri,  M6  =  0,8%  minyak  atsiri,  M7  =  1,6% minyak atsiri.
Mortalitas larva pada uji larvasida dihitung berdasarkan  jumlah  larva  yang  mati  selama  4  hari. Hambatan  aktivitas  makan  atau antifeedant dari minyak  atsiri  diketahui  dengan  menghitung  luas  daun yang dimakan larva setelah 24 jam. Jumlah koloni telur yang  diletakkan  imago  pada  tanaman  inang  dan dinding  kandang  oleh  imago  betina  dewasa  pada tanaman  sawi.  Fitotoksisitas  untuk  melihat  pengaruh minyak atsiri kulit jeruk nipis terhadap tanaman sawi uji.
*Fak. Pertanian UNS Surakarta Jl. Ir. Sutami 36 A Surakarta
Penghitungan persentase mortalitas
larva,
antifeedant , indeks antioviposisi dan luas relatif bercak nekrotik dianalisis terlebih dahulu dengan menggunakan Microsoft  excel .  Selanjutnya,  Analisis statistik  dilakukan  dengan  ANOVA  dan  uji  DMRT menggunakan SPSS dengan tingkat kepercayaan 95%. Data jumlah koloni telur yang diletakkan pada daun dan dinding  pada  uji  antioviposisi  dan  data uji  fitotoksisitas, ditransformasi terlebih dahulu sebelum dianalisis

## HASIL DAN PEMBAHASAN

## Larvasida
Berdasarkan pengamatan yang dilaksanakan, minyak  atsiri  kulit  jeruk  nipis  terhadap  larva  uji  dapat menimbulkan gejala berupa; (1) perubahan warna, yaitu tubuh larva menjadi berwarna kuning pucat, selanjutnya warnanya berubah lagi menjadi coklat kehitaman (mati); (2)  gagal  pupa,  yaitu  ulat  yang  akan  menjadi  pupa berwarna  coklat  kehitaman  tubuhnya  menyusut  dan kering; (3) larva yang masih hidup bergerak lambat dan mengalami penurunan aktifitas makan).
Jumlah  larva  yang  mati  secara  umum  pada  hari pertama  setelah  perlakuan  relatif  rendah.Jumlah  larva yang  mati  pada  hari  kedua  lebih  rendah  dari  hari pertama.  Mortalitas  menurun  karena  larva  mengalami hambatan  aktivitas  makan.  Aktivitas  makan  yang menurun  diduga  menyebabkan  kematian  larva  pada hari  ketiga  dan  keempat.  Aktivitas  makan  yang menurun  juga  dapat  dijadikan  indikasi  adanya gangguan  sistem  pencernaan  pada  tubuh  larva  (Tabel 1). Menurut Dono dan  Susanerwinur (2013),  gangguan pada penerimaan rangsangan pada saat proses makan menyebabkan  serangga  uji  tidak  dapat  melakukan aktivitas  makan  secara  normal.  Aktivitas  makan  yang terganggu  menyebabkan  sebagian  atau  seluruh  nutrisi yang diperlukan serangga tidak dapat terpenuhi.
Tabel  1  Rata-rata  jumlah  larva C.  pavonana yang  mati akibat perlakuan dengan minyak atsiri kulit jeruk nipis.
Perlakuan HSP 1) Total Mortalitas N 1  2 3 4 Air Air +tween 0.1% 0.2% 0.4% 0.8% 1.6% 80 80 80 80 80 80 80 0 0 5 6 18 10 15 0 0 4 4 2 0 9 1 1 9 11 9 16 20 0 2 3 5 3 8 10 1 3 21 26 32 34 54
1) HSP = Hari Setelah Perlakuan
Rata-rata  mortalitas  larva  meningkat  seiring  dengan bertambahnya  konsentrasi  minyak  atsiri.  Berdasarkan uji  DMRT,  mortalitas  larva  pada  konsentrasi  dibawah 1%  tidak  berbeda  nyata.  Konsentrasi  0.1%,  0.2%, 0.4%,  dan 0.8% telah mampu menyebabkan mortalitas sebesar  26.25%,  32.5%,  40%,  dan  42.5%.  Mortalitas larva  pada  konsentrasi  1.6%  sebesar  67.5%  dan berbeda  nyata  dengan  konsentrasi  dibawah  1%(tabel 2).
Tabel  2  Rata-rata  persentase  mortalitas  larva C. pavonana akibat  perlakuan  dengan  minyak  atsiri  kulit jeruk nipis (%)
Perlakuan Ulangan Rata-rata Mortalitas SB 1) 1  2 3 4 Air Air+tween 0.1% 0.2% 0.4% 0.8% 1.6% 0 10 25 30 35 40 55 5 0 10 35 55 50 90 0 0 35 30 30 35 65 0 5 35 35 40 45 60 1.25 3.75 26.25 32.5 40 42.5 67.5 ±2.16 ±4.15 ±10.23 ±2.5 ±9.35 ±5.9 ±13.46 a 2) a b bc bc c d
1) SB = Simpangan Baku (standar deviasi)
2) Angka  yang  diikuti  oleh  huruf  yang  sama  tidak berbeda nyata pada taraf 5% uji DMRT
Berdasarkan hasil penelitian, kecepatan daya bunuh dari minyak atsiri pada uji larvasida rendah dikarenakan sebagian  senyawa  menguap  sebelum  diberikan  pada larva.  Minyak  atsiri  kulit  jeruk  nipis  mudah  menguap (volatil)  karena  kandungan  monoterpena  yang  cukup tinggi.  Minyak  atsiri  kulit  jeruk  nipis  setelah  didestilasi mengandung  senyawa limonene sebesar  44,59%, linalool 5,06%, citronellol
9,72%, dan geraniol 11,96%(Tjokronegoro et al. 2008).
Gambar  1  Grafik  perkembangan  mortalitas  larva C. pavonana .

## A ntifeedant
Minyak  atsiri  kulit  jeruk  nipis  dapat  mempengaruhi aktivitas  makan  dari  larva C.  pavonana .  Hambatan aktivitas  makan  atau antifeedant akibat  minyak  atsiri kurang  dari  50%  (Tabel  3).  serangga  juga  bisa mengambil strategi dengan meningkatkan laju konsumsi. Meningkatnya laju konsumsi, maka makanan harus  segera  diproses  dan  tidak  bisa  disimpan  di pencernaan,  akibatnya  efisiensi  makanan  di  konsumsi dan  efisiensi  makanan  dicerna  bisa  mengalami penurunan  (Lina  et  al.  2015).  Senyawa  pada  minyak atsiri  bersifat antifeedant pada  larva C.  pavonana namun  lemah.  Insektisida  nabati  berbahan  aktif citronellal lebih bersifat sebagai antifeedant terhadap C. pavonana (Willis et al. 2011) .
0 10 20 30 40 50 60 70 80 1 2 3 4 M o rta lita s L a rv a (% ) (HSP)
Air Air +tween 0.10% 0.20% 0.40% 0.80%
Tabel 3 Persentase hambatan aktivitas makan dari larva C. pavonana (%).
Perlakuan Ulangan Rata-rata ±SB 1) 1 2 3 4 Air Air+tween 0.1% 0.2% 0.4% 0.8% 1.6% 6.05 10.90 27.36 38.01 32.20 20.58 44.79 10.90 17.68 46.73 19.61 40.92 22.52 25.42 -8.47 7.02 36.08 24.46 32.20 28.33 18.64 -8.47 2.18 19.61 23.49 12.83 15.74 26.39 0.00 9.44 32.45 26.39 29.54 21.79 28.81 ±0.00 ±5.67 ±10.1 ±6.95 ±10.3 ±4.51 ±9.70 a 2) ab c c c bc c
1) SB = Simpangan Baku (standar deviasi)
2) Angka yang diikuti oleh huruf yang sama tidak berbeda nyata pada taraf 5% uji DMRT

## Antioviposisi
Berdasarkan  hasil  penelitian,  jumlah  koloni  telur yang  diletakkan  paling  banyak  pada  perlakuan  air  dan tween  80.  Jumlah  koloni  telur  lebih  banyak  daripada perlakuan  air  sehingga  indeks  antioviposisi  menjadi  - 46,7%.  Penghambatan  peletakan  telur  tertinggi  pada perlakuan  konsentrasi  0,8  dan  1,6  yakni  sebesar  80% (Tabel  4).  Perlakuan  konsentrasi  0,8%  dan  1,6% terdapat  ulangan  yang  mencapai  100%  atau  tidak  ada telur  yang  diletakkan.  Hal  ini  dikarenakan  mortalitas imago pada 2 HSP. Imago mati diduga karena senyawa pada  minyak  atsiri  yang  menguap  dan  mengganggu pernapasan  imago.  Senyawa  monoterpena  dapat bersifat  repellent  karena  mudah  menguap  (volatil). Senyawa  yang  bersifat  volatil  diterima  oleh  saraf
olfactory sebagai  faktor  penghambat  peletakan  telur (Wiyantono et al. 2001).
Jumlah  koloni  telur  pada  daun  sawi  lebih  banyak dari koloni telur pada dinding. Jumlah koloni telur pada dinding  terbanyak  yakni  pada  perlakuan  0,2%  sebesar 3,75%  dan  berbeda  nyata  dari  perlakuan  lain.  Tidak ada  koloni  telur  pada  perlakuan  0,8%  dan  1,6% didinding,  hal  ini  menunjukkan  bahwa  minyak  atsiri bersifat repellent sekaligus fumigan yang kuat. Menurut Syahbirin  et  al.  (2011),  volatilitas  minyak  atsiri  yang besar  menyebabkan  minyak  atsiri  juga  dapat  berperan sebagai  fumigan  yaitu  racun  yang  bekerja  melalui sistem  pernapasan.  Menurut  Dehgani  dan  Ahmadi (2013),  semakin  volatil  suatu  minyak  atsiri  maka semakin kuat pengaruh repellent dan antioviposisinya.
Tabel 4 Persentase peletakan telur dan Indeks antioviposisi oleh imago betina C. pavonana (%). Perlakuan Jumlah koloni telur Indeks anti oviposisi ±SB 1) Pada daun Pada dinding Air Air+tween 0.1% 0.2% 0.4% 0.8% 1.6% 3.75 5.50 3.75 1.00 1.75 0.75 0.75 ±0.83bc ±1.80c ±0.43bc ±0.71a ±0.43ab ±1.30a ±1.30a 0.00 0.50 0.50 3.75 0.75 0.00 0.00 ±0.0 a ±0.5 a ±0.5 a ±2.8 b ±1.3 a ±0.0 a ±0.0 a 0.00 -46.7 0.00 73.3 53.3 80.0 80.0 a a a b b b b
1) SB = Simpangan Baku (standar deviasi)
2) Angka yang diikuti oleh huruf yang sama tidak berbeda nyata pada taraf 5% uji DMRT
Efektivitas  antipeletakan  telur  tersebut  meningkat dengan  semakin  meningkatnya  konsentrasi  minyak atsiri. Imago Betina mulai meletakkan telur pada hari ke empat  bertambah  sedikit  demi  sedikit  pada  hari selanjutnya. Peletakan telur dimulai pada hari ke empat diduga karena minyak atsiri telah berkurang efektivitasnya  (Gambar  2).  Pestisida  berbasis  minyak atsiri  memiliki  kekurangan  yakni  sifat  volatil  dan  tidak stabil  atau  tidak  tahan  terhadap  sinar  matahari  (Hartati 2012).  Tempat  pengujian  dibawah  sinar  matahari diduga  mempengaruhi presistensi minyak atsiri. Menurut  Dadang  et  al  (2007),  insektisida  asal tumbuhan  mudah  terurai  oleh  cahaya  matahari sehingga memiliki persistensi yang singkat di lapangan. Persistensi  merupakan  jangka  waktu  senyawa  aktif insektisida masih mempunyai aktivitas biologi.
Gambar 2 Jumlah peletakan telur oleh imago betina C. pavonana pada permukaan daun (koloni).
Serangga  yang  berbeda  memiliki  sensitivitas hambatan peletakan telur yang berbeda pula. Senyawa limonene dan ,  linalool bersifat insektisida  fumigan atau racun  pernapasan  bagi Sitophilus  zeamais dewasa (Yildirim  et  al.  2013). Cineole dan myrcene bersifat
0.00 1.00 2.00 3.00 4.00 5.00 6.00 1 2 3 4 5 6 7 8 J u m lah Telu r (K o lon i) HSP Air Air +tween
0.10% 0.20% 0.40% 0.80% 1.60%
fumigan terhadap Sitophilus  oryzae (Abdelgaleil  dan badawy  2009) . Cineole dan betha  pinene memiliki repelensi  yang  tinggi  terhadap Sitophilus  zeamais dewasa (Wang et al. 2009).

## Fitotoksisitas
Berdasarkan  hasil  pengamatan,  gejala  nekrosis akibat  efek  fitotoksik  dari  larutan  uji  terlihat  pada  ujung daun  sawi.  Efek  fitotoksik  terlihat  dengan  gejala  daun tampak  warna  memudar  pada  hari  pertama  setelah perlakuan.  Hari  kedua,  ujung  daun  mengering  dan melengkung kedalam. Hari ketiga, daun yang mengering  berubah  warna  menjadi  kekuningan  dan
keriting. Hari selanjutnya, daun berubah menjadi kuning kecoklatan.
Nekrosis yang terjadi pada daun sawi tidak lebih dari 10%.  Luas  relatif  bercak  nekrotik  beragam  seluruh perlakuan  yang  menggunakan  tween  80  (Tabel  5). Tween 80 diduga dapat menyebabkan kerusakan pada daun  tanaman  sawi.  Tween  80  ( Polyethylene  glycol sorbitan  monooleat )  adalah  surfaktan  nonionik  yang berfungsi sebagai emulsifier minyak dalam air (Feng et al.  2006).  Kandungan  senyawa  monoterpena  dalam minyak  atsiri  juga  diduga  dapat  bersifat  fitotoksik. Gejala  fitotoksik  cenderung  terjadi  pada  tanaman  yang diberi  perlakuan  sediaan  ekstrak/fraksi  insektisida nabati, bukan senyawa murni (Syahputra et al. 2007).
Tabel 5 Rata-rata persentase luas relatif bercak nekrotik pada daun sawi (%).
Perlakuan Ulangan Rata-rata ±SB 1) 1 2 3 4 Air Air+tween 0.1% 0.2% 0.4% 0.8% 1.6% 0.00 2.19 3.96 5.56 2.52 7.14 7.07 0.00 3.17 8.57 4.86 2.81 6.19 0.75 0.00 2.96 7.73 8.63 8.67 7.39 1.53 0.00 5.05 5.96 7.33 4.85 4.47 5.95 0.00 3.34 6.56 6.59 4.71 6.30 3.82 ±0 ±1.05 ±1.77 ±1.48 ±2.46 ±1.15 ±2.73
a 2) b b b
b b
b
1) SB = Simpangan Baku (standar deviasi)
2) Angka yang diikuti oleh huruf yang sama tidak berbeda nyata pada taraf 5% uji DMRT
Penggunaan  surfaktan  pada  kadar  yang  lebih  tinggi akan  berkumpul  membentuk  agregat  yang  disebut misel  (Attwood  dan  Florence  1985).  Surfaktan  dengan kadar  tinggi  sampai Critical  Micelle  Concentration (CMC) maka surfaktan diasumsikan mampu berinteraksi kompleks dengan obat tertentu selanjutnya dapat  pula  mempengaruhi  permeabilitas  membran tempat  absorbsi  obat  karena  surfaktan  dan  membran mengandung komponen penyusun yang sama (Sudjaswadi  1991).  Apabila  permeabilitas  membran menjadi  rusak  maka  mengakibatkan  kematian  sel. Tween  80  pada konsentrasi tinggi dapat menyebabkan terjadinya nekrosis.
Senyawa monoterpena pada minyak atsiri kulit jeruk nipis dapat  bersifat fitotoksik pada tanaman tergantung pada  bagian,  umur  dan  jenis  tanaman  yang  di  uji. Limonene dan alpha  pinene tidak  bersifat  fitotoksik pada  akar  bibit  padi  (Zhang  et  al.  2012).  Senyawa monoterpenoid  ( myrcene,  limonene,  pinene,  linalool dan citral )  menyebabkan  kerusakan  pada  daun  dan batang bibit selada namun lemah (Fujii et al. 2005).

## KESIMPULAN DAN SARAN

## Kesimpulan
Kesimpulan  yang  dapat  diambil  dari  penelitian  ini adalah:
1.  Minyak  atsiri  kulit  jeruk  nipis  dapat  mempengaruhi ulat kubis atau C. pavonana secara lambat.
2.  Mortalitas  larva  pada  konsentrasi  1,6%  sebesar 67,5%.  Hambatan  aktivitas  makan  akibat  minyak atsiri  kurang  dari  50%.  Penghambatan  peletakan telur  signifikan  pada  konsentrasi  0,2%,  0,8%  dan 1,6%.  Tween  80  menyebabkan  nekrosis  pada  daun sawi kurang dari 10%.

## Saran
Saran yang dapat penulis berikan bagi penelitian ini adalah  petani  dapat  menggunakan  minyak  atsiri  kulit jeruk  nipis  sebagai  pestisida  hama C.  pavonana dengan konsentrasi 1,6% untuk pengendalian larva dan konsentrasi 0,2% untuk pengendalian imago.

## DAFTAR PUSTAKA
Abdelgaleil  SAM,  Badawy  MEI.  2009.  Fumigant  and Contact  Toxicities  of  Monoterpenes  to  Sitophilus oryzae  (L.)  and  Tribolium  castaneum  (Herbst)  and their  Inhibitory  Effects  on  Acetylcholinesterase Activity. J Chem Ecol. 35: 518 –525.  DOI: 10.1007/s10886.009.9635.3.
Asriani  N  W,  Bagus  IGN,  Darmiati  NN.  2013. Keragaman  dan  kepadatan  populasi  predator  yang berasosiasi  dengan  hama  penting  pada  tanaman kubis ( Brasica oleraceae L.). J Agroteknologi Tropika. 2(3): 155-164.
Attwood  D,  Florence  AT.  1985.  Surfactan  System.  1st Ed. London: Chapman and Hall.
Dadang,  Isnaeni  N,  Ohsawa  K.  2007.  Ketahanan  dan pengaruh fitotoksik campuran ekstrak Piper retrofractum  dan  annona  squamosa  pada  pengujian semi lapangan. J HPT Tropika. 7 (2): 91 – 99.
Dehgani  M,  Ahmadi  K.  2013.  Repellence  and  anti- oviposition activities of plant products on greenhouse whitefly. Pharmacognosy Com.
3 (2):2-5. DOI:10.5530/pc.2013.2.2. Dono,  Ismayana  S,  Idar,  Prijono  D,  Muslikha  I.  2010. Status Dan Mekanisme Resistensi Biokimia Crocidolomia pavonana (F.) (Lepidoptera:
Crambidae)  terhadap  Insektisida  Organofosfat  serta Kepekaannya terhadap Insektisida Botani Ekstrak Biji
Barringtonia  asiatica .  J  Entomol.  Indon.  7(1):  9-27. DOI: 10.5994/jei719.
Dono, Susanerwinur. 2013. Toksisitas dan anti oviposisi ekstrak  metanol  kulit  biji  jambu  mete Anacardium occidentale L.) ( Anacardiaceae ) terhadap
Crocidolomia  pavonana F.  (Lepidoptera:  Pyralidae). Bionatura 15(2): 79 - 82.
Feng  JH,  Zeng  YY,  Ma  CQ,  Cai  XF,  Zhang  Q,  Tang MY,  Yu  B,  Xu  P.  2006.  The  Surfactant  Tween  80
Enhances Biodesulfurization.
Applied and Environmental  Microbiology  72  (11):  7390-7393. DOI:10.1128/AEM.014.74.06
Fujii Y, Matsuyama M, Hiradate S, Shimozawa H. 2005. Dish  pack  method:  a  new  bioassay  for  volatile allelopathy.  Proceedings  of  the  4th  World  Congress on  Allelopathy,  "Establishing  the  Scientific  Base", Wagga  Wagga,  New  South  Wales,  Australia,  21-26 August 2005.
Hartati SY 2012. Prospek Pengembangan Minyak Atsiri Sebagai Pestisida Nabati. Perspektif 11 (1): 45 - 58. Lina,  Dadang,  Manuwoto  S,  Syahbirin  G.  2015.
Gangguan  fisiologi  dan  biokimia Crocidolomia pavonana (F.)  (Lepidoptera:  Crambidae)  akibat perlakuan  ekstrak  campuran Tephrosia  vogelli dan Piper aduncum. J Entomologi Indonesia. 12 (2): 100- 107. DOI: 10.5994/jei.12.2.100.
Moraes  TM,  Helio  K,  Fabio  CM,  Raquel  CS,  Lucia RMR, Marcia OM, wagner V, Cleilia AH. 2009. Effect of  limonene  and  essential  oil  from  Citrus  aurantifolia on gastric mucosa: role of prostaglandins and Gastric mucus secretion. J. CBI 180 (2009): 499-505.
Othman N. 1982. Biology of Crocidolomia binotalis Zell. (Lepidoptera:  Pyralidae)  and  Its  Patasites  From Cipanas Area (West Java). Bogor: Seameo Regional Center for Tropical Biology.
Patil  JR,  Jayaprakasha  GK,  Murthy  KNC,  Tichy  SE, Chetti  MB.  2009.  Apoptosis-mediated  proliferation inhibition  of  human  colon  cancer  cells  by  volatile principles of Citrus aurantifolia. J Food chemistry.114 (2009): 1351-1358.
Pracaya. 1999. Hama dan Penyakit Tanaman. Jakarta: Penebar Swadaya.
Sudjaswadi R. 1991. Tween 80 dan Stabilitas Asetosal. Majalah Farmasi Indonesia 2(1): 28-34.
Syahbirin  G,  Hertika  C,  Prijono  D,  Dadang.  2011. Potensi  minyak  atsiri  daun Cinnamomum  multiflorum sebagai  insektisida  nabati  terhadap  ulat  kubis Crocidolomia  pavonana . dalam Dahlan  K,  Maddu  A, Supena EDJ, Miftahudin, Nugrahani EH, Kusnanto A, Mulijani  S,  Sulistiyani  (eds).  prosiding  Seminar Nasional  Sains  IV.Bogor.  Peran  Sains  dalam Peningkatan Produktivitas Pertanian. 235-246. Syahputra,  Prijono  D,  Dono  D.  2007.  Sediaan insektisida Calophyllum  soulattri :  aktivitas  insektisida dan  residu  terhadap  larva Crocidolomia  pavonana dan  keamanan  pada  tanaman.  J  HPT  Tropika.  7(1): 21 – 29.
Tjokronegoro RK, Murad S, Imron SS, Asnani H. 2008. A  New  Formulation  Of  Insecticide,  Repellent,  And Larvicide  Against  Mosquitoes  From  The  Waste Product Of Jeruk Nipis (Citrus Aurantifolia) .
Jatinangor  (ID):  Proceeding  Of  The  International Seminar In Chemistry.
Wang  Y,  You  CX,  Wang  CF,  Yang  K,  Chen  R,  Zhang WJ,  Du  SS,  Geng  ZF,  Deng  ZW.  2014.  Chemical constituents and insecticidal activities of the essential oil  from  amomum  tsaoko  against  two  stored-product insects.  J  Oleo  Sci.  63(10):  1019-1026.  DOI: 10.5650/jos.ess14.08.7.
Willis  M, Wiratno  D, WahyunoT  E, Wahyono,  Sondang S. 2011.  Pemanfaatan limbah tanaman atsiri sebagai repelen  hama Crocidolomia  binotalis pada  brokoli (30%)  dan  pupuk  organik  (2%  kadar  N).  Laporan Teknis  Penelitian  Tahun  Anggaran  2011.  Balai Penelitian Tanaman Rempah dan Obat.
Wiyantono,  Prijono  D,  Manuwoto  S.  2001.  Bioaktivitas ekstrak biji Aglaia harmsiana terhadap ulat krop kubis Crocidolomia pavonana. J II Pert Indon. 10(1): 1-7. Yildirim  E,  Emsen  B,  Kordali  S.  2013.  Insecticidal effects  of  monoterpenes  on  Sitophilus  zeamais Motschulsky  (Coleoptera:  Curculionidae).  Journal  of Applied  Botany  and  Food  Quality.  86(1):  198  -  204. DOI: 10.5073/JABFQ.2013.086.027.
Zhang  FJ,  Guo  JY,  Chen  FX,  Liu  WX, Wan  FH.  2012. Identification  of  Volatile  Compounds  Released  by Leaves of the Invasive  Plant Croftonweed (Ageratina adenophora, Compositae), and their Inhibition of Rice Seedling  Growth.  weed  science  60(2):  205-211. DOI:10.1614/WSD.11.00156.1. (Abstr).