Vol. 08 No. 3, Desember 2017, Hal 197-202 ISSN: 2086-8227

## PENGGUNAAN CENDAWAN ENTOMOPATOGEN
Beauveria bassiana (BALSAMO) VUILLEMIN DAN
Lecanicillium lecanii (ZIMM) ZARE & GAMS UNTUK MENGENDALIKAN Helopeltis antonii SIGN
(HEMIPTERA: MIRIDAE)
The Use of Entomopathogenic Fungi Beauveria bassiana (Balsamo)Vuillemin and Lecanicillium lecanii (Zimm) Zare & Gams) for Controlling Helopeltis antonii Sign (Hemiptera: Miridae)
Sri Hastuti Anggarawati 1 , Teguh Santoso 2 , dan Ruly Anwar 2
1 Departemen Silvikultur, Fakultas Kehutanan IPB
2 Staf pengajar Departemen Proteksi Tanaman, Fakultas Pertanian IPB

## ABSTRACT
Helopeltis sp . has been known as one of major pests on tea, cacao and cashew plantation. Recently, genus Helopeltis is also reported attack Acacia plantation in Sumatra and Kalimantan. For such extensive plantation, low cost biocontrol agents like entomopathogenic fungi are choosen because of the simplicity for mass production. The objective of this study was to measure the effectiveness of Beauveria bassiana and Lecanicillium lecanii against Helopeltis sp. Both fungi that were  used  in  this  study  were  obtained  from  IPB  Insect  Pathology  Laboratory.  The  tested  insect, Helopeltis sp.  was collected  from  Gunung  Mas  tea  plantation.  The  insects  were  reared  in  laboratory.  Four  level  of  conidial  density,  10 9 , 10 8 , 10 7 , 10 6 conidia/ mL were applied to Helopeltis adult ( B. bassiana ) and 3 rd instar nymph ( L. lecanii ). Daily mortality was  observed  until  seven  days  post  treatment.  The  result  showed  that L.  lecanii at  10 6 conidia/mL  caused  96.25% mortality of 3 rd instar nymph of Helopeltis sp. with the LC 50 value at two days observation was 1.03 x 10 6 conidia/ mL, LT 50 was  1.198  days  and  LT 95 was  5.25  days.  On  the  other  hand, B.  bassiana at  10 6 conidia/  mL  caused  81.25%. mortality  of  adult Helopeltis sp.  while  100%  mortality  could  be  attained  by  using  10 8 conidia/  mL . The  LC 50 of B. bassiana was 3.2 x 10 4 conidia/ mL, at four days observation and LT 50 was 4.214 days. The two fungi were thus judged effective against Helopeltis sp. in this bio assay.
Key words: Beauveria bassiana , conidia, density, Helopeltis sp., Lecanicillium lecanii, mortality.

## PENDAHULUAN
Helopeltis sp.  merupakan  salah  satu  hama  penting pada  berbagai  jenis  tanaman  tropis,  khususnya  teh, kakao,  kina,  jambu  mete  dan  lada,  tetapi  digolongkan sebagai hama minor di tanaman kehutanan. Kerusakannya  kadang-kadang ditemukan pada tanaman mahoni,  ketapang,  kayu  manis,  dan  melia.  Laporan terkini  menyebutkan  bahwa  kerusakan  berat  oleh Helopeltis sp.  ini  terjadi  pada Eucalyptus muda  dan tegakan  akasia  di  Indonesia  (Wylie et  al. 1998 dalam Speight  dan  Wylie  2001).  Tingkat  kerusakan  pada tanaman  teh  dapat  mencapai  50%  dan  pada  suatu  saat akan  meningkat  mencapai  100%  (Sukasman  1996). Serangan Helopeltis sp. pada pucuk akasia menyebabkan  bercak  nekrotik  pada  daun  dan  kematian tunas  muda.  Kematian  tunas  muda  tersebut  disebabkan oleh cairan saliva yang bersifat toksik atau oleh patogen dalam  proses  serangannya  (Nair  dan  Sumardi  2000). Luas  serangan  yang  ditimbulkan  pada  tanaman  akasia muda  di  Kalimantan  Timur,  dapat  mencapai  100% (Santoso T 2013, komunikasi pribadi), dengan intensitas serangan  bervariasi  namun  dapat  mencapai  50%.
Penggunaan  insektisida  seperti  deltametrin  telah digunakan  oleh  beberapa  perusahaan  Hutan  Tanaman Industri  (HTI)  untuk  mengendalikan Helopeltis sp.  di lapangan (Nair dan Sumardi 2000).
Penggunaan  pestisida  dalam  mengendalikan  hama dan  penyakit  tidak  hanya  mencemari  lingkungan  dan menimbulkan  resistensi  hama,  tetapi  juga  relatif  mahal apabila  diterapkan  pada  skala  besar.  Oleh  karena  itu, perlu  dilakukan  upaya  pengendalian  yang  lebih  murah dan bersifat ramah lingkungan, yaitu dengan menggunakan  agens  hayati seperti bakteri, virus, fungi, protozoa,  ricketsia,  dan  nematoda.  Di  antara  agens hayati  tersebut,  cendawan  entomopatogen  mempunyai prospek  penting  karena  selain  efektif  juga  lebih  murah dan  sederhana  cara  perbanyakannya.  Entomopatogen mempunyai  peran  penting  yang  dapat  menyebabkan tingginya  kematian  populasi  serangga  dan  aman  bagi serangga non target (Subramaniam et al . 2009).
Beberapa jenis cendawan entomopatogen yang telah dimanfaatkan  untuk  mengendalikan  hama  antara  lain Metarhizium  anisopliae , Beauveria  bassiana ,  dan Lecanicillium sp. (= Verticillium sp.). Entomopatogen B. bassiana dan L.  lecanii merupakan  cendawan  yang
sudah  diketahui  keefektifannya  dalam  mengendalikan sejumlah serangga hama.
Cendawan B.  bassiana mampu  mengendalikan  80- 100%  hama  tungau  (Deciyanto  dan  Indrayani  2009), 100%  larva  dan  73.75%  imago Brontispa  longissima (Hosang et  al. 2004).  Suspensi  konidia B.  bassiana dengan  konsentrasi  1.1  x  10 8 konidia/  mL  air  yang diaplikasikan langsung pada serangga Helopeltis antonii di  laboratorium,  menyebabkan  kematian  serangga sebesar  94  –  98%,  sedangkan  yang  diaplikasikan  pada pakan  dapat  menyebabkan  kematian  sebesar  86  –  92% (Suriati 2008).
Cendawan L.  lecanii merupakan  salah  satu    agen pengendali hayati yang potensial untuk digunakan pada hama-hama  pertanian,  seperti  kutudaun,  kutuputih, thrips,  dan  kutu  kebul  (Ferron  1985).    Cendawan L. lecanii mampu  mengendalikan Scirtothrips  bispinosus (Subramaniam et al . 2010), Aphis gossypii (Gurulingappa et  al. 2010), Riptortus  linearis (Prayogo 2009). Khusus terhadap Helopeltis sp., Solikhah (2013) telah  menunjukkan  kemampuan  cendawan L.  lecanii dalam  menghambat  penetasan  telur,  namun  penelitian terkait  potensi  cendawan  tersebut  untuk  pengendalian nimfa dan imago Helopeltis sp. belum dilakukan.
Penelitian  ini  dilakukan  untuk  mengukur  potensi cendawan B.  bassiana dan L.  lecanii dalam mengendalikan serangga hama Helopeltis sp.

## Tujuan Penelitian
Mengetahui  keefektifan  cendawan  entomopatogen B.  bassiana dan L.  lecanii terhadap  serangga  hama H. antonii

## BAHAN DAN METODE

## Tempat dan Waktu
Kegiatan  penelitian  dilakukan  di  Laboratorium Patologi  Serangga  Departemen  Proteksi  Tanaman Fakultas  Pertanian  IPB.  Penelitian  dilaksanakan  mulai bulan Januari– Juli 2013.

## Serangga dan Cendawan Uji

## Perbanyakan Serangga Uji
Serangga  uji  yang  digunakan  dalam  penelitian adalah  serangga H. antonii yang  diperoleh  dari Perkebunan Teh Gunung Mas. Serangga yang diperoleh dari lapangan dipelihara dan diperbanyak sesuai metode perbanyakan H. antonii oleh  Kilin  dan  Atmaja  (1999) yaitu  dengan  menggunakan  pakan  buah  ketimun.  Buah ketimun dimasukkan ke dalam wadah plastik berdiameter  16  cm  dan  tinggi  17  cm.  Posisi  ketimun berdiri  dengan  cara  disandarkan  pada  dinding  wadah bagian  dalam.  Sepasang  imago  dimasukkan  ke  dalam wadah  tersebut  dan  ditutup  dengan  kain  kasa.  Ketimun diganti setiap  hari dengan  ketimun  yang baru. Ketimun yang  berisi  telur,  setelah  dihitung  jumlah  telurnya dimasukkan  ke  dalam  wadah  lain  dan  ditutup  dengan kain  kasa.  Nimfa  instar  1  yang  telah  muncul
dimasukkan  ke dalam  wadah  baru  yang berisi  ketimun. Pakan  tersebut  diganti  setiap  hari  sampai  diperoleh jumlah dan stadia serangga yang digunakan.

## Cendawan Uji
Cendawan B.  bassiana dan L.  lecanii yang digunakan  dalam  penelitian, merupakan koleksi Laboratorium  Patologi  Serangga  Departemen  Proteksi Tanaman  Fakultas  Pertanian  IPB. B.  bassiana berasal dari  serangga Leptocorisa  oratorius ,  sedangkan L. lecanii diisolasi  dari Riptortus  linearis .  Untuk  menguji tingkat virulensinya, kedua cendawan tersebut diinokulasikan pada imago Tenebrio molitor (Coleoptera:  Tenebrionidae).  Miselia  yang  keluar  dari serangga  tersebut  diisolasi  ke  media  PDA,  kemudian dipindahkan  ke  media  beras.  Beras  dicuci  bersih kemudian  dikukus  setengah  matang  dengan  api  kecil selama  ±  15-20  menit.  Beras  dikeringanginkan  untuk menghilangkan  uap  panas,  kemudian  dimasukkan  ke dalam  kantong  plastik  tahan  panas  sebanyak  50  g  dan disterilisasi  dengan  autoklaf  pada  suhu  121ºC  dan tekanan  2  atm  selama  15  menit.  Proses  pemindahan inokulum  cendawan  ke  media  beras  dilakukan  di Laminar Air Flow dengan memasukkan potongan media PDA  yang  ditumbuhi  cendawan  ke  dalam  media  beras, kemudian plastik ditutup rapat. Media beras disimpan di dalam  ruangan  yang  gelap  pada  suhu  kamar  selama  21 hari.

## Penyiapan Suspensi Cendawan Entomopatogen
Biakan B. bassiana dan L. lecanii pada media beras yang telah berumur 21 hari disiapkan sebanyak 100 g (2 kantong  plastik).  Media  beras  tersebut  digerus  dengan menggunakan  mortar  sampai  halus.  Biakan  cendawan yang  sudah  dihaluskan  ditambahkan  100  mL  air disterilkan  yang  telah  dicampur  dengan  Tween  20 (konsentrasi  0.05%).  Penyaringan  dilakukan  untuk memisahkan  media  beras  dengan  suspensi  konidia. Suspensi konidia yang telah disaring kemudian dikocok dengan  menggunakan  vortex  selama 30 detik.  Suspensi yang  telah  dikocok  kemudian  dihitung  jumlah konidianya  dengan  menggunakan haemocytometer
Neubauer-improved.
Selanjutnya dilakukan pengenceran  dengan  air  steril  hingga  diperoleh kerapatan  konidia  10 9 /mL.  Demikian  seterusnya  dibuat pengenceran  bertingkat  untuk  mendapatkan  kerapatan konidia  10 8 /mL,  10 7 /mL,  dan  10 6 /mL,  yang  dibutuhkan untuk perlakuan.
Aplikasi cendawan B. bassiana dan L. lecanii Empat  perlakuan  kerapatan  konidia  10 6 ,  10 7 ,  10 8 , dan  10 9 konidia/mL  dari  suspensi B.  bassiana dan kontrol,  disemprotkan  pada  imago H. antonii .  Dengan perlakuan  kerapatan  konidia  yang  sama,  10 6 ,  10 7 ,  10 8 , dan 10 9 konidia/mL dari suspensi L. lecanii dan kontrol, disemprotkan  pada  nimfa  instar  ke-3 H.  antonii yang ditempatkan  pada  wadah  plastik.  Perlakuan  diulang sebanyak  empat  kali  dengan  jumlah  serangga  20  ekor/ ulangan.  Aplikasi  penyemprotan  menggunakan  sprayer tangan  dengan  volume  semprot  ±  2  mL  suspensi  per ulangan,  sedangkan  untuk  kontrol  serangga  disemprot dengan air steril yang dicampur Tween 20. Serangga uji
yang  telah  disemprot  dimasukkan  ke  dalam  wadah plastik  yang  telah  diberi  pakan  pucuk  akasia.  Pucuk tersebut  diganti  setiap  hari  untuk  menjaga  kesegaran pakan H. antonii. Pengamatan  dilakukan  setiap  hari sampai hari ke-7 setelah aplikasi. Pengamatan dilakukan terhadap  mortalitas,  waktu  terjadinya  mortalitas,  dan perkembangan pertumbuhan cendawan patogen.

## Analisis Data
Perbedaan mortalitas antar tingkat kerapatan konidia dan  kontrol  dianalisis  dengan  program  SPSS  13.0  for windows  dan  diuji  dengan  uji  duncan  (α  =  0.05). Konsentrasi kematian (LC 50 ) dan waktu kematian (LT 50 ) dihitung  dengan  analisis  probit  menggunakan  program Polo  Plus  Probit  and  Logit  Analysis  1.0  LeOra Software.

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Persentase  mortalitas  nimfa H.  antonii yang terinfeksi  oleh L.  lecanii tercantum  pada  Tabel  1. Cendawan L.  lecanii mampu  mematikan H. antonii lebih  dari  50%  pada  pengamatan  hari  pertama  untuk kerapatan 10 7 , 10 8 , dan 10 9 konidia/mL. Pada hari ke-3 setelah  perlakuan  terlihat  bahwa  kerapatan  10 9 /mL, L. lecanii mampu  mematikan  100% H.  antonii (Tabel  1). Pada  kerapatan  konidia  10 8 ,  10 7 ,  10 6 /mL  sampai  pada akhir  pengamatan  (hari  ke-7),  mortalitas  serangga H. antonii mencapai  lebih  dari  95%  tetapi  tidak  sampai 100%. Hal ini menunjukkan bahwa dalam percobaan ini aplikasi L. lecanii efektif mematikan H. antonii . Hasil  uji  statistika  menunjukkan  bahwa  pada perlakuan  kontrol  tidak  ada  penambahan  mortalitas H. antonii pada  setiap  hari  pengamatan,  berbeda  nyata dengan  perlakuan  kerapatan  konidia  10 6 ,  10 7 ,  10 8 ,  dan 10 9 /mL. Pada kerapatan konidia 10 9 /mL, mortalitas H. antonii terus meningkat setiap harinya sampai pada hari ke-3  setelah  perlakuan,  dengan  mortalitas  mencapai 100%.  Demikian  juga  kerapatan  konidia  10 8 dan  10 7 /mL  mengakibatkan  mortalitas H.  antonii yang  terus meningkat  setiap  harinya  sampai  pada  hari  ke-4  HSP sebesar  98.75%  dan  97.5%.  Sementara  pada  kerapatan 10 6 /mL.  mortalitas H.  antonii terus  meningkat  sampai hari ke-6 HSP sebesar 96.25%. Mortalitas ini meningkat seiring  meningkatnya  kerapatan  konidia  yaitu  97.5% untuk  kerapatan  konidia  10 7 /mL,  sebanyak    98.75% untuk  kerapatan  konidia  10 8 /mL,  dan  100%  untuk kerapatan konidia 10 9 /mL.
Hubungan  antara  mortalitas H.  antonii dengan kerapatan  konidia  ditunjukkan  dengan  persamaan regresi  y  =  8x  +  66.25.  Artinya,  jika  kerapatan  konidia L. lecanii naik sebesar satu unit satuan, maka mortalitas akan  ikut  naik  sebesar  8%  (Gambar  1).  Dengan menggunakan  empat  kerapatan  konidia  10 6 ,  10 7 ,  10 8 , 10 9 konidia  /mL,  garis  regresi  yang  diperoleh menunjukkan hubungan linear dengan nilai R 2 = 0.914. Karena  tidak  ada  mortalitas  serangga  kontrol,  data percobaan ini dianggap tidak menunjukkan heterogenitas data yang tinggi.
Gambar 1  Hubungan antara kerapatan konidia dengan mortalitas H.  antonii yang  terinfeksi cendawan L.  lecanii pada  hari  kedua pengamatan.
L.  lecanii mampu  menginfeksi  nimfa H. antonii mencapai  100%  untuk  kerapatan  konidia  10 9 /mL  dan pada  kerapatan  konidia  terendah  yaitu  10 6 /mL  juga mampu  mematikan  lebih  dari  90%  serangga  uji. Serangga  uji  yang  telah  mati  memperlihatkan  adanya miselia  yang  keluar  pada  ruas-ruas  tungkainya.  Pada hari  ke-3  setelah  kematian,  miselia L.  lecanii mulai tumbuh  dan  semakin  lama  semakin  menutupi  bagian tubuh  serangga  uji.  Setelah  dilakukan  pengamatan konidia  dibawah  mikroskop,  terlihat  bahwa  cendawan tersebut  mempunyai  deskripsi  yang  sesuai  dengan L. lecanii yang  diaplikasikan  (Gambar  3a),  yaitu  konidia yang  berbentuk  lonjong,  seragam,  terlihat  memisah, berpasangan  atau  melingkar  sepanjang  hifa  atau berkumpul  pada  ujung  hifa,  dan  konidia  terbungkus  di dalam kantong lendir (Humber 1997).
Tingginya  tingkat  mortalitas  nimfa  oleh L.  lecanii bisa  disebabkan  karena  integumen  nimfa  yang  lunak dan  tipis  sehingga L.  lecanii lebih  mudah  menginfeksi serangga  uji.  Infeksi L.  lecanii pada  tubuh  nimfa H. antonii ,  mampu  mempengaruhi  serangga  uji  ini  dalam melakukan proses ganti kulit, hal ini terlihat dari adanya serangga  uji  yang  mengalami  kegagalan  dalam  proses ganti kulit.
Pada hari ke-4 setelah aplikasi B. bassiana , serangga H. antonii berhasil  terinfeksi  lebih  dari  90%  untuk kerapatan  konidia  10 8 dan  10 9 /mL.  Pada  kerapatan konidia 10 7 dan 10 6 /mL, mortalitas serangga H. antonii mencapai  lebih  dari  50%  pada  hari  yang  sama.  Pada pengujian serangga H. antonii dengan  menggunakan B. bassiana ,  digunakan  serangga  imago  dengan  jumlah jantan  dan  betina  seimbang.  Pada  pengamatan  hari ketujuh,  mortalitas  serangga  sebesar  81.25%  terjadi pada  kerapatan  konidia  10 6 /mL,  sedangkan  pada kerapatan konidia 10 7 /mL mortalitas serangga mencapai 97.50%.  Pada  kerapatan  konidia  10 8 dan  10 9 /mL, mortalitas H. antonii sebesar  100%  (Tabel  2).  Hal  ini menunjukkan  bahwa  dalam  percobaan  ini  aplikasi B. bassiana efektif mematikan serangga H. antonii .
Uji  statistika  menunjukkan  bahwa  pada  perlakuan kontrol  tidak  ada  penambahan  mortalitas H.  antonii pada  setiap  hari  pengamatan,  berbeda  nyata  dengan perlakuan kerapatan  konidia 10 6 , 10 7 , 10 8 , dan 10 9 /mL pada hari ke-2 HSP. Pada konsentrasi kerapatan 10 9 dan
10 8 konidia/  mL,  mortalitas H.  antonii terus  meningkat setiap  harinya  sampai  pada  hari  ke-5  HSP,  dengan mortalitas  mencapai  100%.  Demikian  juga  pada kerapatan  konidia  10 7 /mL  mortalitas H.  antonii terus meningkat  setiap  harinya  sampai  pada  hari  ke-7  HSP sebesar  97.50%.  Sementara  pada  kerapatan  konidia  10 6 /mL,  mortalitas H.  antonii terus  meningkat  sampai  hari ke-7 HSP sebesar 81.25%.
Hubungan  antara  mortalitas H.  antonii dengan kerapatan  konidia  ditunjukkan  dengan  persamaan regresi  y  =  16.5x  +  39.37.  Artinya,  jika  kerapatan konidia B. bassiana naik sebesar satu unit satuan, maka mortalitas  akan  ikut  naik  sebesar  16.5%  (Gambar  2). Dengan  menggunakan  empat  kerapatan  konidia  10 6 , 10 7 ,  10 8 ,  10 9 konidia/mL,  garis  regresi  yang  diperoleh menunjukkan hubungan linear dengan nilai R 2 = 0.902. Karena  tidak  ada  mortalitas  serangga  kontrol,  data percobaan ini dianggap
tidak
menunjukkan heterogenitas data yang tinggi.
Gambar 2  Hubungan  antara  kerapatan  konidia  dengan mortalitas H. antonii yang  terinfeksi cendawan B.  bassiana pada  hari  keempat pengamatan.
Tabel 1  Persentase mortalitas kumulatif harian nimfa H. antonii yang terinfeksi cendawan L. Lecanii pada berbagai kerapatan konidia
Perlakuan konidia/ mL Mortalitas (%) Hari Setelah Perlakuan (HSP) 1 2 3 4 5 6 7 Kontrol 0 0 0 0 0 0 0 10 9 78.75 96.25 100.00 100.00 100.00 100.00 100.00 10 8 77.50 91.25 0 96.25 0 98.75 0 98.75 0 98.75 0 98.75 10 7 65.00 86.25 0 96.25 0 97.50 0 97.50 0 97.50 0 97.50 10 6 42.50 71.25 0 83.75 0 91.25 0 95.00 0 96.25 0 96.25
Tabel 2. Persentase mortalitas kumulatif imago H. antonii yang terinfeksi cendawan B. bassiana .
Perlakuan konidia/ mL % Mortalitas (%) Hari Setelah Perlakuan (HSP) 1 2 3 4 5 6 7 kontrol 0 0 0 0 0 0 0 10 9 07.50 16.25 41.25 98.75 100.00 100.00 100.00 10 8 03.75 16.25 45.00 97.50 100.00 100.00 100.00 10 7 03.75 08.75 21.25 75.00 87.50 87.50 97.50 10 6 03.75 13.75 20.00 51.25 65.00 68.75 81.25
Berdasarkan  hasil  analisis  probit  cendawan L. lecanii yang dilakukan pada  hari  kedua HSP, diperoleh LC 50 sebesar  1.03  x  10 6 konidia/mL,  sedangkan  untuk nilai  LT 50 dan LT 95 masing-masing adalah 1.198 (1  – 2 hari) dan 5.25 (5 – 6 hari). Dengan kata lain, kerapatan konidia  yang  dibutuhkan  untuk  mengendalikan  50% populasi  adalah  1.03  x  10 6 konidia/mL,  dan  dengan kerapatan  ini,  50%  populasi  serangga H.  antonii dikendalikan dalam waktu 1.2 hari. Sebagai perbandingan,  dengan  menggunakan  isolat  cendawan yang  sama,  Agustin  (2013)  mendapatkan  nilai  LC 50 untuk  hama  penggerek  batang  jagung Ostrinia furnacalis sebesar  1.62  x  10 6 konidia/mL.  Solikhah (2013) memperoleh  nilai  LC 50 L. lecanii untuk telur H. antonii sebesar  3.3  x  10 7 konidia/mL.  Hasil  ini  juga mengindikasikan  bahwa  serangga  hama H.  antonii sangat  rentan  terhadap  infeksi  oleh L.  lecanii .  Hal  ini menunjukkan bahwa apabila dibandingkan dengan telur, nimfa  instar  ketiga H.  antonii yang  diteliti  cenderung
lebih rentan terhadap L. lecanii . Kerentanan yang tinggi ini  karena  serangga  uji  yang  digunakan  adalah  nimfa instar  ke-3  dan  diduga  pada  stadia  ini  integument serangga masih mudah ditembus oleh cendawan.
Hasil  analisis  probit  cendawan B.  bassiana yang dilakukan  pada  hari  keempat  HSP,  diperoleh  LC 50 sebesar  3.2  x  10 4 konidia/mL,  sedangkan  untuk  LT 50 dan  LT 95 masing-masing  adalah  4.214  (4  –  5  hari)  dan 13.050  (13  hari).  Dengan  kata  lain,  kerapatan  konidia yang  dibutuhkan  untuk  mengendalikan  50%  populasi adalah 3.2 x 10 4 konidia/ mL, dan dengan kerapatan ini, 50%  populasi  serangga H.  antonii dikendalikan  dalam waktu  4.2  hari  (Tabel  3).  Zulyusri  (2005)  memperoleh nilai  LC 50 cendawan B.  bassiana terhadap  larva Crocidolomia pavonana (Lepidopera: Pyralidae) sebesar  2.01  x  10 9 konidia/mL.  Ratissa  (2011) memperoleh  nilai  LC 50 B.  bassiana untuk Cylas formicarius sebesar  1.1  x  10 9 konidia/mL.  Jika dibandingkan  nilai  LC 50 antar  beberapa  serangga
tersebut,  terlihat  bahwa H.  antonii sangat  rentan terhadap infeksi oleh B. bassiana .
Tabel  3  Nilai  LC 50 ,  LT 50 ,  dan  LT 95 cendawan B. bassiana dan L. lecanii terhadap H. antonii . Analisis probit B. bassiana L. lecanii LC 50 3.2 x 10 4 konidia/mL 1.03 x 10 6 konidia/mL LT 50 4.214 hari 1.198 hari LT 95 13.050 hari 5.25 hari
Konidia  cendawan B.  bassiana mulai  berkecambah pada  hari  ke-2  setelah  perlakuan.  Hal  tersebut  dapat diketahui  dari  adanya  miselia  yang  tumbuh  pada  ruas- ruas  tungkai  dan  antena  serangga  inang  juga  pada bagian  thoraks  serangga  inang.  Miselia  tersebut kemudian  tumbuh  dan  berkembang,  sehingga  seluruh tubuh  serangga  inang  dipenuhi  oleh  miselia  cendawan B.  bassiana .  Setelah  dilakukan  pengamatan  konidia dibawah  mikroskop,  terlihat  bahwa  cendawan  tersebut mempunyai  deskripsi  yang  sesuai  dengan B.  bassiana yang  diaplikasikan  (Gambar  3b),  yaitu  memiliki  ciri
konidia  yang  berbentuk  bulat  dengan  percabangan konidiofor yang berbentuk zig-zag, konidiofor biasanya bergerombol  atau  melingkar  atau  sendiri-sendiri,  tidak berwarna, serangga yang terinfeksi akan terlihat adanya miselia  cendawan  berwarna  putih,  yang  menutupi seluruh  tubuhnya  (Humber  1997).  Menurut  Ferron (1985)  cendawan  entomopatogen  akan  melewati  dua siklus  yaitu  siklus  parasit  dan  siklus  saprofit.  Siklus parasit  dimulai  dari  penempelan  konidia  ke  tubuh serangga  (dalam  hal  ini  aplikasi  penyemprotan)  sampai dengan  serangga  mati.  Kematian  serangga  inang diakibatkan  oleh  kolonisasi  cendawan  didalam  tubuh inang  disertai  dengan  toksikasi  oleh  racun  yang diproduksi  oleh  cendawan.  Cendawan B.  bassiana mengeluarkan toksin beauvericin. Dalam percobaan ini, kematian  serangga  dapat  berlangsung  dalam  1  hari sesudah  perlakuan.  Siklus  saprofit  dimulai  sejak kematian  serangga  sampai  kemunculan  cendawan  di permukaan  tubuh  inang.  Dalam  percobaan  ini,  siklus saprofit dapat teramati mulai hari kedua.
Gambar 3  Konidia cendawan L. lecanii (a) dan B. bassiana (b) (pembesaran 400x).
Mortalitas imago H. antonii oleh B. bassiana sangat tinggi,  yaitu sebesar 100 % pada kerapatan  konidia 10 9 /mL.  Pada  kerapatan  10 8 konidia/mL,  kematian  yang diakibatkan  mencapai  97.5%.  Hasil    ini  sesuai  dengan yang  diperoleh  Suriati  (2008)  yang  menyatakan  bahwa suspensi  konidia B.  bassiana dengan  konsentrasi  1.1  x 10 8 konidia/mL  air  yang  diaplikasikan  langsung  pada serangga H.  antonii di  laboratorium,  menyebabkan kematian  serangga  sebesar  94  –  98%,  sedangkan  yang diaplikasikan  pada  pakan  pengganti  (buah  mentimun) menyebabkan kematian sebesar 86 – 92%.
Cendawan  entomopatogen B.  bassiana dan L. lecanii merupakan  salah  satu  alternatif  pengendalian hayati yang murah dan mudah. Apabila diaplikasikan di areal yang sangat luas seperti HTI, kedua cendawan ini sangat  mudah  untuk  diproduksi  karena  pada  umumnya aplikasi  pengendalian  hayati  di  lapangan  dengan memanfaatkan  cendawan  yang  dibiakkan  pada  media beras.  Berdasarkan  perhitungan  sederhana,  diketahui bahwa  dengan  menggunakan  400 l volume  semprot untuk areal seluas 1 ha, hanya memerlukan sekitar 40 kg beras.  Hal  ini  menunjukkan  bahwa  pemanfaatan  kedua
jenis  cendawan  ini  cukup  murah,  efektif  dan  efisien untuk pengendalian di lapangan.

## SIMPULAN DAN SARAN
Cendawan  entomopatogen L.  lecanii menyebabkan mortalitas  nimfa  instar  ketiga H. antonii sebesar  100% pada kerapatan konidia 10 9 /mL. Nilai LC 50 sebesar 1.03 x 10 6 konidia/ mL, LT 50 dan LT 95 masing-masing adalah 1.198 (1 – 2 hari) dan 5.25 (5 – 6 hari).
Cendawan  entomopatogen B.  bassiana berhasil menyebabkan mortalitas imago H. antonii sebesar 100% pada kerapatan konidia 10 8 dan 10 9 /mL di laboratorium. Nilai LC 50 sebesar 3.2 x 10 4 konidia/ mL, LT 50 dan LT 95 masing-masing adalah 4.214 (4 – 5 hari) dan 13.050 (13 hari).
Hal  ini  menunjukkan  bahwa  dalam  percobaan  ini aplikasi B.  bassiana dan L.  lecanii efektif  mematikan serangga H. antonii .
a b

## DAFTAR PUSTAKA
Agustin D. 2013. Uji keefektifan cendawan entomopatogen Beauveria  bassiana (Balsamo) Vuillemin  dan Lecanicillium  lecanii (Zimm.) Zare  &  Gams  terhadap  telur  dan  larva penggerek batang jagung asia Ostrinia furnacalis (Lepidoptera:  Crambidae)  [tesis]. Bogor  (ID):  Sekolah  Pascasarjana  Institut Pertanian Bogor.
Deciyanto  S  dan  Indrayani  IGAA.  2009.  Jamur entomopatogen Beauveria bassiana : potensi dan prospeknya  dalam  pengendalian  hama  tungau. Perspektif (Ind). 8(2): 65-73. Ferron  P.  1985.  Fungal  control.  Di  dalam:  Kerkut  GA, Gilbert  LI,  editor. Comprehensive  Insect Physiology  Biochemistry  and Pharmacology; Volume 12. Oxford (EG): Pergamon Press. hlm 313-346.
Gurulingappa  P,  Peter  Allan  McGee,  Sword  G.  2010. Endophytic Lecanicillium lecanii and Beauveria bassiana reduce  the  survival  and  fecundity  of Aphis  gossypii following  contact  with  conidia and  secondary  metabolites. J  CroPro .  30 (2011): 349-353. doi:10.1016/j.cropro.2010.11.017.
Hosang  MLA,  Tumewan  F,  Alouw  JC.  2004. Efektivitas cendawan
entomopatogen Metarhizium  anisopliae var. anisopliae dan Beauveria  bassiana terhadap  hama Brontispa longissima .  Prosiding  simposium  IV  hasil penelitian  tanaman  perkebunan:  2004  Sept  28- 30: Bogor. Bogor (ID): Pusat Penelitian dan Pe- ngembangan Perkebunan. hlm 561-568.
Humber  RA.  1997.  Fungi:  Identification.  Di  dalam: Lacey L, editor. Manual of Techniques in Insect Patology . California (US): Academic Press. hlm 153-185.
Kilin  D  dan  Atmaja  WR.  1999.  Perbanyakan  serangga Helopeltis antonii Sign. pada buah ketimun dan pucuk jambu mente. J Pen Tan Inds . 5(4): 119- 122.
Nair KSS dan Sumardi. 2000. Insect pests and diseases of  major  plantation  species .  Di  dalam:  Nair
KSS,  editor. Insect  Pests  and  Diseases  in Indonesian Forests . Bogor (ID). Cifor. hlm 15. Prayogo  Y.  2009.  Kajian  cendawan  entomopatogen Lecanicillium  lecanii (Zimm.)  (Viegas)  Zare  & Gams untuk menekan perkembangan telur hama pengisap  polong  kedelai Riptortus  linearis (F.) (Hemiptera:  Alydidae)  [disertasi].  Bogor  (ID):
Sekolah Pascasarjana, Institut Pertanian Bogor. Ratissa DA. 2011. Keefektifan cendawan entomopatogen Beauveria  bassiana (Bals.) Vuill terhadap Cylas formicarius (F.)
(Coleoptera:  Brentidae)  dan  pengaruhnya  pada keperidian  [skripsi].  Bogor  (ID):  Fakultas
Pertanian Institut Pertanian Bogor. Solikhah DR. 2013. Infektivitas cendawan Lecanicillium  lecanii terhadap  telur Helopeltis sp.  (Hemiptera:  Miridae)  [skripsi].  Bogor  (ID): Fakultas Pertanian Institut pertanian Bogor.
Speight  MR  dan  Wylie  FR.  2001. Insect  Pests  of Tropical  Forestry .  New  York  (US):  CABI Publishing.
Subramaniam MSR, Babu A, Pradeepa N. 2010. A new report of entomopathogen, Lecanicillium lecanii infecting  larvae  of  the  tea  thrips, Scirtothrips bispinosus (Bagnall). J Biosci . 1(3): 146-148. Sukasman.  1996.  Entomopatogen  sebagai  insektisida.
Di  dalam:  Martosupono et  al . Alternatif Pengendalian  Hama  Teh  secara  Hayati. Prosiding  Seminar  Sehari :  1996  Des  5: Gambung.  Bandung  (ID):  Pusat  Penelitian  Teh dan Kina. hlm 31-40.
Suriati  S.  2008. Beauveria  bassiana dan Metarrhizium anisopliae bio  insektisida  ramah  lingkungan. Warta  Penelitian  &  Pengembangan  Tanaman
Industri . 14(2): 30-31.
Zulyusri. 2005. Interaksi antara cendawan entomopatogen Beauveria  bassiana (Bals.) Vuill. (Deuteromycotina: Hyphomycetes), parasitoid Eriborus  argenteopilosus Cammeron (Hymenoptera: Ichneumonidae) dan hama kubis Crocidolomia  pavonana (F.)  (Lepidoptera: Pyralidae).