Kinerja produksi dan respons fisiologis elver ikan sidat Anguilla bicolor bicolor McClelland, 1844 yang dipelihara dengan sistem basah, lembap,
dan kering
[Production performance and physiology response of Anguilla bicolor bicolor rearing with a wet, damp and dry system]
Eko Harianto 1,2  , Eddy Supriyono 3 , Tatag Budiardi 3 , Ridwan Affandi 4 , Yani Hadiroseyani 3
1 Mahasiswa Program Doktor, Program Studi Ilmu Akuakultur, Sekolah Pascasarjana, Institut Pertanian Bogor (IPB)
2 Program Studi Budidaya Perairan, Fakultas Pertanian, Universitas Batanghari Jambi, Jl. Slamet Ryadi, Broni Jambi 36122
3 Departemen Budidaya Perairan, FPIK IPB
Kampus IPB Dramaga, Jalan Agatis 16680
4 Departemen Manajemen Sumberdaya Perairan, FPIK IPB Kampus IPB Dramaga, Jalan Agatis 16680
eharianto27@gmail.com , eddysupriyonoipb@gmail.com, tatagbdp@yahoo.com, ridwan_affandi@yahoo.com, yanihadiroseyani@gmail.com
Diterima: 10 Desember 2019; Disetujui: 19 Mei 2020

## Abstrak
Budi daya ikan sering terkendala terhadap ketersediaan air, baik kualitas maupun kuantitasnya.  Ikan sidat ( Anguilla bicolor bicolor ) merupakan spesies ikan yang dalam sistem pemeliharaannya membutuhkan volume air yang banyak. Tujuan penelitian ini adalah menentukan sistem pemeliharaan terbaik elver ikan sidat ( A. bicolor bicolor ) pada sistem basah,  lembap,  dan  kering  melalui  kajian  kinerja  produksi  dan  respons  fisiologis.  Penelitian  dilakukan  dari  bulan Agustus  sampai  September  2018  di  Laboratorium  Teknik  Produksi  dan  Manajemen  Akuakultur,  Departemen Budidaya  Perairan,  Institut  Pertanian  Bogor.  Penelitian  menggunakan  rancangan  acak  lengkap  5  perlakuan  dan  3 ulangan, yaitu perlakuan sistem basah tinggi air 0% dari tinggi badan (A), sistem basah tinggi air 50% dari tinggi badan (B), sistem basah tinggi air 100% dari tinggi badan (C), sistem lembap (D), dan sistem kering (E). Ikan yang digunakan adalah elver ikan sidat berukuran 18,80±0,62g yang berasal dari pembudidaya di Bogor Jawa Barat. Pakan yang digunakan adalah pakan komersial dengan kadar protein 50% yang diberikan secara at satiation 3 kali per hari. Hasil penelitian menunjukkan bahwa  perlakuan C memberikan hasil terbaik dengan nilai  sintasan 100%, laju per- tumbuhan spesifik 0,45 % hari -1 , laju pertumbuhan mutlak 0,07 g hari -1 dan rasio konversi pakan sebesar 6,57. Hasil analisis ragam menunjukkan bahwa perlakuan memberikan pengaruh yang nyata (p<0,05). Nilai glukosa darah pada perlakuan C merupakan nilai yang paling mendekati dengan kondisi ikan sidat sebelum perlakuan.
Kata penting: ikan sidat, sistem kering, sistem lembap, respons fisiologis

## Abstract
Aquaculture is is often constrained by the availability of water, both in quality and quantity.  The aim of this study was to determine the optimum maintenance system of elver (Anguilla bicolor bicolor) on a wet, moist and dry system through  production performance studies  and physiological responses.   The  research  was  conducted  from  August  to September 2018 at the Production Technic and Management of Aquaculture Laboratory, Department of Aquaculture, IPB University. A completely randomized design with 5 treatments and 3 replications was used in this study, namely treatment with high water wet system 0% of body height (A), high water wet system 50% of body height (B), high water wet system 100% of body height (C), moist system (D), and dry system (E). The body weight of elver was 18.80 ± 0.62 g which derived from fish cultivator in Bogor, West Java. Fish was fed 3 times per day at satiation with commercial  feed which a  protein  content  of 50%.  Results  showed that treatment C was the  best  result with survival rate of 100%, the specific growth rate of 0.45% day -1 , the absolute growth rate of 0.07 g day 1 and feed conversion ratio of 6.57. The analysis of variance showed that the treatments showed the significant effect (P <0.05). The blood glucose value closest to the eel condition before treatment was found in the treatment C.
Keywords:  eel, dry system, moist system, physiological responses, wet system

## Pendahuluan
Ikan sidat merupakan ikan bernilai ekonomi tinggi  dengan  pangsa  pasar  yang  meningkat setiap  tahunnya  (Shiraishi &  Crook  2015,  Pike
et al. 2019). Pada tahun 2016 total produksi ikan sidat  dunia  sebesar  286.000  ton  (FAO  2018). Produksi  ikan  sidat  di Indonesia  hanya  sebesar 10.000  ton  atau  sekitar  8,33%  dari  target produksi sebesar 120.000 ton (KKP 2017). Upa- ya  peningkatan  produksi  ikan  sidat  tersebut harus  didukung  dengan  teknologi  pendederan dan  pembesaran  ikan  sidat  yang  efisien  dan maksimal.  Salah  satu  aspek  penting  dalam pengembangan  teknologi  pendederan  dan pembesaran  ikan  sidat  adalah  perbaikan  media budi daya. Media budi daya pada skala produksi dan penelitian masih berbasis pada penggunaan volume air yang besar.
Secara  umum  kegiatan  pendederan  dan pembesaran  elver  ikan  sidat  semi  intensif  di Asia membutuhkan volume air yang besar yakni 4000 m 3 air per hari atau 100.000 m 3 per tahun produksi. Kegiatan budi daya intensif elver ikan sidat di Eropa dengan kepadatan 120 kg m 3 rata- rata  membutuhkan  pergantian  air  sebanyak  60 m 3 per  harinya  (Nielsen  &  Prouzet  2008).
Beberapa  penelitian  elver  ikan  sidat  dengan wadah  akuarium  masih  membutuhkan  volume air  yang  tinggi  yakni  rata-rata  berkisar  antara 30-120 L (Harianto et al. 2014, Diansyah et al.
2014,  Scabra et  al. 2016,  Handajani et  al.
2018).  Akan  tetapi,  hasil  penelitian  Taufik et al. (2017)  menunjukkan  bahwa  pertumbuhan ikan sidat A.  bicolor  bicolor stadia elver makin meningkat  dengan  menurunnya  volume  air pemeliharaan.
Ikan  sidat  merupakan  spesies  yang  kuat terhadap  perubahan  berbagai  kondisi  perairan seperti  suhu,  pH,  dan  salinitas  yang  memung-
kinkan  mereka  untuk  melakukan  ruaya  atau bergerak ke muara sungai untuk tumbuh sampai dewasa  dan  kembali  lagi  menuju  laut  dalam untuk  reproduksi (Tsukamoto &  Kuroki  2014). Ikan  sidat  memiliki  kemampuan  bernafas  de- ngan kulit dan hampir sebagian pernafasan ku- lit dapat digunakan ketika ikan ini berada pada kondisi  hipoksia.  Ikan  sidat  mampu  menyerap oksigen  dari  udara  oleh  kulit  sekitar  60%  dari total respirasi dalam air pada suhu 22°C (Krogh 1904 in Forster 1981). Respons ikan sidat pada media dengan kandungan oksigen rendah adalah mengeluarkan  lendir.  Secara  eksperimental, lendir yang dilepaskan menyebabkan ikan sidat bertahan  sampai  tujuh  hari  pada  kelembaban udara  yang  normal  dan  suhu  rendah  (Tesch 2003).
Tesch  (2003)  menunjukkan  bahwa  ikan sidat memiliki struktur kulit yang tebal sehingga pada kondisi hipoksia semua kebutuhan oksigen dapat  dipenuhi  secara  cepat  dengan  respirasi kulit.  Hal  tersebut  mendasari  pemikiran  bahwa budidaya ikan sidat tidak selalu memerlukan vo- lume  air  yang  banyak,  sehingga  dapat  mening- katkan efisiensi penggunaan air.
Ikan  sidat  dalam  fase  ruaya  ke  muara sungai (perairan tawar) sering berhadapan pada kondisi  hipoksia.  Kondisi  tersebut  terjadi  pada saat  ikan  sidat  bermigrasi  ke  hulu  (air  tawar) atau pada saat ikan sidat menggali lubang untuk bersembunyi (Graham 1997, van Waarde et  al . 1983,  Hyde et  al .  1987).  Selama  pada  kondisi tersebut,  ikan  sidat  menggunakan  sistem  per- nafasan  udara  dengan  gelembung  renang  dan saluran  pneumatik  untuk  bertahan  hidup  (Mott 1951, Fange 1976)
Secara umum, ikan-ikan yang memiliki alat bantu  pernafasan  memiliki  kemampuan  untuk hidup  dengan  volume  air  rendah,  akan  tetapi
masih  perlu  kajian  lebih  lanjut  terkait  hal  ter- sebut.  Studi  ini  dilakukan  untuk  melihat  dan menganalisis  respons  adaptasi  elver  ikan  sidat terhadap  kondisi  sistem  pemeliharaan  kering, lembap, dan basah. Hasil penelitian ini diharap- kan  dapat  menjadi  dasar  dalam  pengembangan teknologi  pendederan  dan  pembesaran  elver ikan  sidat.  Tujuan  penelitian  ini  adalah  me- nentukan sistem pemeliharaan terbaik elver ikan sidat  ( A.  bicolor  bicolor )  pada  sistem  basah, lembap  dan  kering  melalui  kajian  kinerja  pro- duksi dan respons fisiologis.

## Bahan dan metode

## Waktu dan tempat
Penelitian  ini  dilaksanakan  pada  bulan Agustus  sampai  September  2018  di  Laborato- rium  Teknik  Produksi  dan  Manajemen  Akua- kultur, Departemen Budidaya Perairan, Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, Institut Pertanian Bogor.  Analisis  glukosa  darah,  histologi  dan kualitas  air  dilakukan  di  laboratorium  di  ling- kungan  Departemen  Budidaya  Perairan, Fakultas  Perikanan  dan  Ilmu  Kelautan,  Institut Pertanian Bogor.

## Rancangan percobaan
Penelitian  ini  menggunakan    rancangan acak lengkap terdiri atas 5 perlakuan dan 3 kali ulangan,  sehingga  terdiri  atas  15  satuan percobaan.  Perlakuan  yang  digunakan  adalah media  basah  dengan  tinggi  air  0%  dari  tinggi badan  (A),  media  basah  dengan  tinggi  air  50% dari  tinggi  badan  (B),  media  basah  dengan tinggi air 100% dari tinggi badan (sama dengan tinggi badan ikan sidat) (C), media lembap (D), dan  media  kering  (E).  Selain  itu,  data  dari perlakuan  tersebut  akan  dibandingkan  dengan
pemeliharaan  ikan  sidat  pada  kondisi  normal dengan volume air berkisar antara 30-120 L.

## Prosedur percobaan
Ikan  uji  yang  digunakan  adalah  elver  ikan sidat  yang  berasal  dari  pembudidaya  di  Kabu- paten  Bogor  Jawa  Barat  dengan  bobot  awal 18,80±0,62  g  dan  padat  tebar  10  ekor  per wadah. Pemeliharaan ikan dilakukan selama 30 hari.  Tinggi  badan  ikan  sidat  yang  digunakan sebesar  1,5±0,1  cm.  Percobaan  pada  penelitian ini menggunakan tinggi badan ikan sidat sebagai patokan tinggi air yang akan digunakan sebagai perlakuan. Hal ini dimaksudkan agar ikan sidat masih dapat bersentuhan langsung dengan air.
Wadah  yang  digunakan  pada  perlakuan pemeliharaan  elver  ikan  sidat  dengan  sistem basah yakni perlakuan A, B, dan C (Gambar 1) adalah  wadah  plastik  berukuran  panjang,  lebar dan  tinggi  masing-masing  sebesar  52  cm  ×  31 cm  ×  28  cm.  Wadah  pemeliharaan  dilengkapi dengan  pompa  air  berukuran  13  watt  dengan debit  total  0,07  L  det -1 , top  filter yang  berisi bahan filter antara lain zeolit, karbon aktif, batu karang  dan  kapas  sintetis.  Pemeliharaan  dila- kukan dengan sistem resirkulasi selama 30 hari, wadah  dilubangi  pada  bagian  dasar  sebagai saluran outlet dengan diameter 0,5 cm.
Kontrol  tinggi  air  sesuai  dengan  perlakuan dilakukan  dengan  mengatur  debit  air  yang keluar  dari  saluran inlet .  Wadah  diletakkan  di atas akuarium berukuran 100 cm × 50 cm × 40 cm.  Air  dari  wadah  pemeliharaan  akan  keluar melalui  lubang outlet menuju  akuarium penampung, kemudian air dari dalam akuarium dipompa  ke  dalam  wadah  pemeliharaan  yang terlebih  dahulu  melewati  filter  yang  berisi susunan filter fisik, kimiawi, dan biologis.
Metode  pemeliharaan  dengan  sistem lembap (Gambar 2) menggunakan wadah plastik berukuran  52  cm  ×  31  cm  ×  28  cm.  Wadah pemelihara  dilengkapi  dengan  busa  berukuran 52  cm  ×  31  cm  ×  28  cm  dan  kapas  filter berukuran  50  cm  ×  28  cm  ×1,5  cm  yang direndam  dengan  air  selama  1  jam.  Setelah bahan  cukup  menyimpan  air  kemudian  disusun ke dalam wadah.
Susunan bahan pengisi diatur sesuai dengan fungsinya. Bagian dasar wadah diisi dengan ba- han  busa,  lalu  ikan  uji  diletakkan  di  atas  busa kemudian ditutup dengan styrofoam . Setelah itu,
bagian  atas styrofoam diisi  dengan  kapas  filter dan  ikan  uji  kembali  diletakkan  di  atasnya  dan ditutup  kembali  dengan  busa  dan styrofoam .
Styrofoam digunakan  untuk  mencegah  ikan keluar  dari  masing-masing  ruang.  Rangkaian bahan  pengisi  dibuat  bersusun  untuk  menjaga agar  kondisi  tetap  lembap.  Suhu  selama pengamatan  adalah  28 0 C.  Desain  perlakuan mengacu pada Sandrayani et al. (2013).
Metode pemeliharaan dengan sistem kering (Gambar 3), wadah yang digunakan adalah wa- dah plastik berukuran  52 cm × 31 cm × 28 cm.
Pada  wadah  tersebut  tidak  dilengkapi  dengan
Gambar 1  Desain percobaan perlakuan sistem basah
(A: akuarium penampungan, B: pompa, C: unit filter, D: kontainer pemeliharaan, E: tinggi air
pemeliharaan, F: lubang outlet
Gambar 2. Desain percobaan perlakuan sistem lembap.
(A: busa, B: ikan uji, C: styrofoam , D: kapas sintetis)
bahan apa pun. Dasar wadah dibilas dengan air sampai  permukaan  dasar  basah  dan  tidak  dila- kukan  penambahan  air  selama  pengamatan. Volume  air  yang  digunakan  untuk  pembilasan sebesar 100 mL. Ikan uji dimasukkan ke dalam wadah dan diamati lama waktu bertahan hidup.

## Prosedur pengamatan
Parameter  yang diamati pada penelitian ini adalah  jumlah  ikan  mati,  bobot  tubuh,  media pemeliharaan,  sampel  darah  serta  sampel  kulit dan  insang.  Jumlah  ikan  mati  dihitung  selama masa  pemeliharaan.  Bobot  tubuh  ikan  diukur dengan cara ditimbang pada awal penebaran dan setiap  tujuh  hari  selama  30  hari  masa  pemeli- haraan  dengan  menggunakan  timbangan  digital dengan  ketelitian  0,01  g.  Parameter  media pemeliharaan  (suhu,  pH  dan  oksigen  terlarut) diukur  setiap  hari  selama  30  hari  masa pemeliharaan.    Sampel  darah,  kulit  dan  insang diambil pada awal dan akhir masa pemeliharaan.
Parameter respons fisiologis pada penelitian ini  adalah  jumlah  glukosa  darah  yang  diukur dengan menggunakan alat  GlukoDr.auto TM mo- del  AGM  4000.  Sampel  darah  diambil  pada bagian pangkal ekor menggunakan syring 1 mL.
Pengukuran dilakukan dengan mengikuti prose-
dur  yang  tercantum  pada  alat.  Pengukuran gambaran darah lainnya meliputi jumlah hemo- globin  (Wedemeyer  &  Yasutake  1977)  dan  sel darah merah (SDM) (Blaxhall & Daisley 1973).
Analisis  histologis  insang  dan  kulit dilakukan dengan cara ikan dipingsankan terle- bih  dahulu  dengan  menggunakan  stabilizer, kemudian  ikan  dipotong  pada  bagian  pangkal kepala  untuk  mengambil  bagian  insang,  lalu bagian  punggung  ikan  dipotong  vertikal  dan diambil kulit ikan bagian luar dengan menggu- nakan  gunting  dan  pinset.  Pembuatan  preparat histologis  terhadap  insang  dan  kulit  dilakukan dengan  perwarnaan  hematoxylin-eosin  (HE) (Angka et  al. 1990).  Pengamatan  selanjutnya dilakukan  dengan  mikroskop  binokuler  pada perbesaran 40x.
Parameter kualitas air pemeliharaan diamati setiap hari yang meliputi suhu, pH dan oksigen terlarut.  Suhu  diamati  dengan  termometer  di- gital, pH dengan pH-meter dan oksigen terlarut dengan DO-meter.

## Parameter uji
Parameter  yang  diuji  selama  penelitian meliputi  kinerja  produksi  antara  lain  sintasan (STS), laju pertumbuhan spesifik bobot (LPSb), laju  pertumbuhan  mutlak  bobot  (LPMb),  rasio konversi  pakan  (RKP),  koefisien  keragaman
Gambar 3. Desain percobaan perlakuan media lembap. A: bagian dasar wadah yang diisi air
bobot  (KKb),  parameter  respons  fisiologis antara lain jumlah hemoglobin, jumlah sel darah merah (SDM) dan jumlah glukosa darah. Selain itu dilakukan analisis histologi insang dan kulit serta parameter kualitas air yang meliputi suhu, pH , dan oksigen terlarut.
Sintasan  dihitung  menggunakan  rumus Goddard (1996):
STS= Nt
N0 ×100 Keterangan:
STS  =  sintasan (%)
N t =  jumlah ikan akhir (ekor)
N 0 =  jumlah ikan awal (ekor)
Laju  pertumbuhan  spesifik  bobot  dihitung menggunakan rumus Huisman (1987):
LPSb= ⌊√ Wt W0 t -1⌋ ×100 Keterangan:
LPSb  = laju pertumbuhan spesifik (% hr -1 ),
W t = bobot rata-rata ikan akhir (g),
W 0 = bobot rata-rata ikan awal (g),
T = lama waktu pemeliharaan (hari)
Laju  pertumbuhan  mutlak  bobot  dihitung menggunakan rumus Huisman (1987)
𝐿𝑃𝑀𝑏 = 𝑊𝑡 − 𝑊0
𝑡 Keterangan: LPMb = konversi pakan,
Wt =  bobot  rata-rata  ikan  pada  akhir  peme- liharaan (g),
W0  = bobot rata-rata ikan awal (g)
Rasio  konversi  pakan  merupakan  indikator untuk  menentukan  efektivitas  pakan  (NRC 2011) yang dihitung menggunakan rumus:
RKP = [Wt - (Wo + Wd)] / F
Keterangan:
RKP   = rasio konversi pakan, W t =  biomassa  total  ikan  pada  akhir  peme- liharaan (g),
W 0 =  biomassa  total  ikan  mati  selama  peme- liharaan (g),
W d =  biomassa  total  ikan  pada  awal  pemeli- haraan (g),
F = jumlah pakan selama pemeliharaan (g)
Koefisien  keragaman  bobot  dihitung  de- ngan rumus Steel & Torrie (1981):
KKb = (s/y) × 100
Keterangan: KKb  =  Koefisien keragaman bobot s =  simpangan baku
y =  nilai rata-rata

## Analisis data
Data  yang  diperoleh  dianalisis  dengan menggunakan  program Microsoft  Excel 2013 dan SPSS 22.0. Data parameter kinerja produksi dianalisis  ragam  (ANOVA)  pada  taraf  uji  5%. Apabila  berpengaruh  nyata  dilakukan  uji  lanjut tuckey pada  taraf  uji  5%  untuk  menentukan perbedaan  antar  perlakuan.  Parameter  kualitas air  dianalisis  secara  deskriptif  dan  disajikan dalam bentuk tabel dengan nilai rata-rata.

## Hasil
Hasil  pengukuran  dan  pengamatan  selama 30 hari masa pemeliharaan menunjukkan bahwa ikan sidat yang dipelihara dengan sistem kering (perlakuan E) mengalami kematian semua popu- lasi  pada  hari  ke-3  dan  ke-4.  Ikan  sidat  yang dipelihara dengan sistem lembap (perlakuan D) mengalami  kematian  semua  populasi  pada  hari ke-6 dan ke-7. Pada sistem basah dengan tinggi air  berbeda  (perlakuan  A,  B  dan  C)  elver  ikan sidat  dapat  bertahan  hidup  dan  diamati  selama 30  hari.  Kinerja  produksi  ikan  sidat  yang
meliputi  sintasan,  laju  pertumbuhan  spesifik bobot  (LPSb),  laju  pertumbuhan  mutlak  bobot (LPMb), rasio konversi pakan (RKP), koefisien keragaman bobot (KKb) yang dipelihara selama 30 hari dengan sistem basah, lembap dan kering disajikan  pada  Tabel  1.  Nilai  STS  pada  semua perlakuan  berkisar  antara  66-100%,  nilai  LPSb
terbaik  yaitu  pada  perlakuan  C  sebesar  0,45%. Nilai  LPMb  terbaik  yaitu  pada  perlakuan  C sebesar  0,07  g  hari -1 .  Nilai  RKP  terbaik  yaitu pada  perlakuan  C  sebesar  6,57  dan  nilai  KKb terbaik  terbaik  yaitu  pada  perlakuan  C  sebesar
3,60% (<20%).
Tabel 1. Nilai kinerja produksi elver ikan sidat yang dipelihara selama 30 hari dengan sistem basah dengan tinggi air berbeda Parameter Perlakuan Kondisi  Normal A B C STS (%) 66,67±11,15 a 80,00±20,00 ab 100,00 b 77-100 a LPSb (%) 0,17±0,10 a 0,27±0,13 ab 0,45±0,10 b 0,2-1,47 b LPMb (g hari -1 ) 0,02±0,01 a 0,03±0,02 a 0,07±0,01 b 0,8-3,48 c RKP 23,08±19,85 a 12,86±4,28 b 6,57±1,45 c 0,2-9,30 a KKb (%) 3,04±1,02 a 2,71±0,51 a 3,60±0,68 a 12-39 d
Keterangan:
Huruf tika atas yang sama pada baris yang sama menunjukkan tidak berbeda nyata pada taraf 5% (uji lanjut tuckey ); TKH= sintasan; LPSb= laju pertumbuhan spesifik bobot; LPMb= laju pertumbuhan mutlak bobot; RKP= rasio konversi pakan; KKb= koefisien keragaman bobot; A= basah (0% TT); B= basah (50% TT); C= basah (100% TT). a Affandi et al. 2013, Harianto et al. 2014, Diansyah et al. 2014, Scabra et al. 2016, Handajani et al. 2018. b Affandi et al. 2013, Harianto et al. 2014, Diansyah et al. 2014, Handajani et al. 2018. c Affandi et al. 2013, Scabra et al. 2016. d Harianto et al. 2014, Diansyah et al. 2014, Scabra et al. 2016.
Tabel 2. Gambaran darah elver ikan sidat yang dipelihara selama 30 hari dengan sistem basah dengan
tinggi air berbeda Parameter Sebelum Perlakuan Perlakuan Standar normal A B C Glukosa Darah (mg dL -1 ) 15 30,00±10,6 8 a 38,00±24,0 1 a 18,00±7,64 b 31-32* 27-30* 41-62* Hb (g 100mL -1 ) 11,40 8,60±2,42 a 10,13±1,42 a 10,47±2,34 a 4-5** 8-10** 8-11** Sel darah merah (× 10 6 sel mm -3 ) 1.56 1,59±2,42 a 1,72±1,42 a 1,79±2,34 a 1,21-1,28 × 10 6*** 1,01-1,21 × 10 6*** 1,28-1,30 × 10 6*** 2,413 × 10 6***
Keterangan:
Huruf tika atas yang sama pada baris yang sama menunjukkan tidak berbeda nyata pada taraf 5% (uji lanjut tuckey ); A= basah (0% TT); B= basah (50% TT); C= basah (100% TT). * Harianto et al . 2014, Diansyah et al . 2014, Fekri et al . 2018. ** Fekri et al . 2018, Fekri et al . 2019, Sahan et al . 2007. *** Harianto et al . 2014, Diansyah et al . 2014, Sahan et al . 2007, Ponsen et al . 2009
Ga mbar 1. Ana lisis his tol ogi ins ang da n kuli t pa da elver ikan sidat se lama mas a pe melihar aan (S M : S el mukus , L S : lame la sek unde r, F L : F ila men, H PL : Hipoplas
ia,
FL S : Fus i lame la se kunde r, KN : k uli t nor mal , Kr s : kr ena si, He matoxyli n-E os in 40x
Respons  fisiologis  ikan  sidat  yang  meliput glukosa  darah,  hemoglobin  (Hb)  dan  sel  darah merah  (SDM)  yang  dipelihara  selama  30  hari dengan sistem basah, lembap dan kering disaji- kan  pada  Tabel  2.  Glukosa  darah  mengalami fluktuasi  selama  masa  pemeliharaan.  Jumlah glukosa  darah  sebelum  diberikan  perlakuan  se- besar 15 mg dL- 1 . Nilai glukosa darah pada per- lakuan C sebesar 18 mg dL- 1 , perlakuan A dan B  masing-masing  sebesar  30  dan  38  mg  dL- 1 . Gambaran  darah  (hemoglobin  dan  sel  darah merah)  pada  semua  perlakuan  masih  berada pada kisaran normal dengan nilai berkisar antara 8,60-10,47 g 100mL -1 dan 1,59-1,79×10 6 mL -1 . Analisis  histologi  pada  organ  insang  dan kulit elver ikan sidat yang diukur pada awal dan akhir pemeliharaan ditunjukkan pada Gambar 1. Analisis  histologi  dilakukan  dengan  pewarnaan hematoxylin-eosin  (HE)  dan  preparat  diamati menggunakan  mikroskop  dengan  perbesaran 40x.  Analisis  ini  bertujuan  untuk  melihat  per- ubahan  struktur  morfologi  organ  akibat  perla- kuan yang diberikan.
Hasil  pengukuran  kualitas  air  selama  30 hari masa pemeliharaan disajikan pada Tabel 3. Secara  umum  nilai  kualitas  air  pemeliharaan elver ikan sidat masih berada pada kisaran atau batas  optimal  untuk  pemeliharaan  elver  ikan
sidat. Nilai suhu berkisar antara 26-29 o C, nilai pH  berkisar  antara  6,5-7,9  dan  nilai  oksigen terlarut berkisar antara 5,6-8,4 mg L -1 .

## Pembahasan
Ikan  sidat  merupakan  organisme  akuatik yang  memiliki  tingkat  ketahanan  yang  tinggi terhadap  kondisi  hipoksia.  Ikan  ini  mampu menyerap oksigen melalui insang ketika berada di  dalam  air  dan  menggunakan  kulit  ketika berada di luar air (Tesch 2003). Krogh (1904) in Forster (1981) mengemukakan bahwa ikan sidat memiliki  kemampuan  bernafas  dengan  kulit dan  hampir  sebagian  pernafasan  kulit  dapat digunakan ketika ikan  ini  berada  pada kondisi hipoksia.  Ikan  sidat  mampu  menyerap  oksigen dari  udara  oleh  kulit  sekitar  60%  dari  total respirasi dalam air pada suhu 22°C. Akan tetapi aktivitas  pernapasan  kulit  sangat  bergantung pada  waktu  paparan  ikan  sidat  terhadap  udara, semakin lama ikan sidat berada di luar media air maka  kinerja  pernapasan  kulit  akan  semakin menurun dan menyebabkan ikan gagal bernafas dan  mengalami  kematian.  Hal  seperti  ini  telah dilaporkan  Thompson et  al .  (2008)  bahwa tingkat  kematian  pada Micropterus spp.  yang terpapar  udara  selama  10-15  menit  pada  suhu 23°C  dan  21°C,  menunjukkan  hasil  ikan  sulit
Tabel 3. Nilai kinerja produksi elver ikan sidat yang dipelihara selama 30 dengan sistem basah dengan tinggi air berbeda Parameter Perlakuan Referensi A B C Suhu ( o C) 27-29 26-29 27-28 28–33 1 27-31 2 pH 6,8-7,5 7,2-7,9 6,5-7,8 6,0–8,0 3 6,6-7,7 2 Oksigen terlarut (mg L -1 ) 7,5-8,4 5,6-7,2 6,8-7,3 >3 4 4,5-8,8 2
Keterangan:
1 Luo et al . 2013, 2 Harianto et al . 2014, 3 Tseng & Wu 2004, 4 Herianti 2005
mengalami  fase  pemulihan,  mengalami  kega- galan  untuk  mempertahankan  kesetimbangan, serta terjadi peningkatan gula darah.
Pada  penelitian  ini,  ikan  uji  yang  dipa- parkan pada udara (tanpa air) dalam waktu yang lama  mati  semua.  Kematian  ikan  uji  pada metode  kering  dan  lembap  diduga  disebabkan ikan  uji  mengalami  paparan  udara  yang berlangsung  lama  sehingga  ikan  uji  mengalami kegagalan  respirasi  yang  menyebabkan  sel-sel tubuh  pecah  dan  ikan  mati.  Hasil  penelitian menunjukkan  bahwa  di  sepanjang  tubuh  ikan berwarna  merah.  Hal  ini  juga  dijelaskan  oleh Ferguson & Tufts (1992), bahwa ketika ikan di luar media air filamen insang dan lamela insang menempel  satu  sama  lain,  sehingga  pertukaran gas melalui kapiler di lamela insang terhenti dan menyebabkan  respirasi  aerobik  berhenti.  Keku- rangan  oksigen  menyebabkan  penumpukan asam  laktat  selama  pernapasan  sehingga  ikan mengalami  kematian  (Ferguson  &  Tufts  1992, Suski et al. 2004).
Pada  perlakuan  C  dengan  volume  air tertinggi  menghasilkan  nilai  sintasan  sebesar 100%.  Hal  ini  menunjukkan  bahwa  ikan  sidat mampu  diadaptasikan  untuk  hidup  dengan ketinggian  air  rendah  dengan  jumlah  minimal sama  dengan  tinggi  badan  ikan  sidat  tersebut. Akan  tetapi  ikan  ini  tidak  dapat  hidup  secara baik pada kondisi ketinggian air berada separuh badan  dan  di  bawah  badannya.  Ikan  sidat termasuk  dalam  kelompok  ikan  yang  mampu bernafas  langsung  dari  udara  namun  masih membutuhkan  air  untuk  bernafas  dan  tetap menjaga  kondisi  tubuhnya  lembap.  Dalam  hal ini,  pernapasan  kulit  hanya  digunakan  ketika ikan berada di luar media air untuk waktu yang singkat  (Graham  1997).  Nilai  kinerja  produksi menunjukkan  bahwa  semakin  tinggi  ketinggian
air  yang  diberikan  (perlakuan  C)  akan  membe- rikan  respons  yang  semakin  baik.  STS  sebesar 100%  yang  dicapai  pada  perlakuan  C menunjukkan bahwa ikan sidat tidak mengalami stres.  Dengan  demikian,  fungsi  fisiologis  ikan dapat berlangsung dengan baik sehingga mampu mempertahankan  kelangsungan  hidupnya  dan mengonversi  pakan  yang  diberikan  menjadi biomassa  untuk  tumbuh.  Nilai  sintasan  perla- kuan  C  sama  baiknya  dengan  hasil  penelitian Harianto et  al. (2014), Diansyah et  al. (2014),
Scabra et  al. (2016),  Handajani et  al. (2018) dengan  volume  air  pemeliharaan  sebesar  30- 120 L dengan nilai sintasan berkisar antara 77- 100%.
Pertumbuhan merupakan parameter penting dalam budidaya, bersama dengan parameter sin- tasan  akan  menentukan  nilai  produksi  (bio- massa).  Pada  perlakuan  C,  nilai  laju  pertum- buhan  spesifik  bobot  dan  laju  pertumbuhan mutlak  bobot  masing-masing  sebesar  0,45  % hari -1 ,  0,07  g  hari -1 .  Nilai  ini  memberikan  arti bahwa  terjadi  pertambahan  bobot  pada  ikan sidat  selama  pemeliharaan.  Penambahan  bobot tersebut  disebabkan  oleh  konsumsi  pakan  yang diberikan berupa pelet komersial dengan protein 50%  mampu  memberikan  energi  untuk  diman- faatkan untuk pertumbuhan. Nilai pertumbuhan pada penelitian ini lebih rendah daripada peneli- tian  lain  dengan  kondisi  media  pemeliharaan ikan  sidat  normal  dengan  volume  air  48-120  L yakni  berkisar  antara  0,2-1,47  untuk  laju pertumbuhan  spesifik  bobot  (Affandi et  al.
2013,  Harianto et  al. 2014,  Diansyah et  al.
2014, Handajani et  al. 2018)  dan  0,8-3,48 laju pertumbuhan  mutlak  bobot  (Affandi et  al. 2013, Scabra et al. 2016).
Rasio konversi pakan merupakan tolok ukur tingkat  pemanfaatan  pakan  oleh  ikan.  Semakin
rendah nilai konversi pakan, semakin baik mutu pakan  tersebut,  dan  sebaliknya.  Nilai  rasio konversi  pakan  terendah  pada  penelitian  ini sebesar  6,57  (perlakuan  C)  berbeda  signifikan (p<0,05)  dibandingkan  dengan  perlakuan  lain- nya.  Pakan  yang  diberikan  pada  penelitian  ini adalah  pelet  komersial  dengan  protein  50%. Rendahnya  rasio  konversi  pakan  menunjukkan tingginya  efisiensi  penggunaan  pakan  untuk menjadi  daging  oleh  ikan  sidat.  Penelitian  ten- tang  pakan  pada  budi  daya  sidat  menunjukkan bahwa rasio konversi pakan  pada pemeliharaan elver berkisar pada angka 1,17-1,25 untuk elver 4 g dengan pakan buatan berkadar protein 45% (Djajasewaka 2003).
Koefisien  keragaman  bobot  menunjukkan tingkat  keseragaman  bobot  pada  akhir  pene- litian, semakin tinggi nilai koefisien keragaman maka tingkat keseragaman bobot semakin kecil. Koefisien  keragaman  bobot  ikan  sidat  pada penelitian  ini  berkisar  antara  3,04-3,60%. Peningkatan ketinggian air tidak mempengaruhi koefisien  keragaman  bobot  ikan  sidat.  Nilai koefisien keragaman bobot dalam penelitian ini berada di bawah 20% artinya keseragaman ikan sidat  di  akhir  penelitian  tinggi  (Baras et  al.
2011).  Koefisien  keragaman  bobot  elver  ikan sidat  pada  kondisi  media  pemeliharaan  ikan sidat normal dengan volume air 48-120 L yakni berkisar  antara  12-39%  (Harianto et  al. 2014,
Diansyah et al. 2014, Scabra et al. 2016).
Respons  fisiologis  ikan  sidat  pada  pene- litian ini ditunjukkan pada Tabel 2. Berdasarkan Tabel  2  tersebut  terlihat  bahwa  nilai  glukosa darah  sebelum  perlakuan  sebesar  15  mgdL -1 .
Nilai  ini  mengalami  peningkatan  pada  akhir masa  pemeliharaan  dengan  nilai  peningkatan tertinggi sebesar 30 dan 38 mgdL -1 (perlakuan A dan B), sedangkan pada perlakuan C juga meng-
alami peningkatan sebesar 18 mgdL -1 . Menurut Fekri (2014), ikan sidat ukuran 1–2 g memiliki nilai  glukosa  darah  sebesar  15,4  mgdL -1 .  Nilai glukosa  darah  pada  penelitian  ini  lebih  rendah dari  hasil  penelitian  Fekri et  al. (2018)  yakni sebesar  41-62  mgdL -1 .  Meningkatnya  kadar glukosa  dalam  plasma  darah  ikan  selama  stres kemungkinan disebabkan oleh aksi katekolamin pada  pusat  glikogen  dalam  hati  dan  jaringan (Svobodova et  al. ,  2006).  Semakin  tinggi  nilai peningkatan  nilai  glukosa  darah  mengindika- sikan  ikan  berada  dalam  kondisi  stres,  akan tetapi  kondisi  tersebut  masih  berada  pada  ki- saran toleransi ikan sidat. Ikan sidat merupakan spesies  yang  kuat  terhadap  perubahan  berbagai kondisi perairan seperti suhu, pH, dan salinitas. Hal  tersebut  memungkinkan  elver  sidat  untuk melakukan ruaya atau bergerak ke muara sungai untuk tumbuh sampai dewasa dan kembali lagi menuju  laut  dalam  untuk  reproduksi (Tsukamoto & Kuroki 2014).
Hemoglobin  merupakan  bentuk  protein globin  dalam  eritrosit  yang  tidak  berwarna  dan pigmen heme dalam eritrosit. Nilai hemoglobin sebelum penelitian sebesar 11,40 g 100mL -1 dan mengalami  fluktuasi  pada  masing-masing perlakuan  sebesar  8,60  g100mL -1 )  (A), 10,13 g100mL -1 (B)  dan  10,47  g100mL -1 (C).
Nilai  ini  masih  berada  pada  kisaran  normal yakni sebesar 8-11 g 100mL -1 (Fekri et al . 2019, Sahan et al . 2007) 3,45-13,65 g100 mL -1 (Hall et al .  1929 in Setiawati et  al .  2007).  Hal  ini  me- nunjukkan bahwa perlakuan ketinggian air yang diberikan  tidak  berpengaruh  nyata  terhadap kadar hemoglobin dalam darah ikan.
Nilai  sel  darah  merah  memberikan  infor- masi  terkait  kinerja  beberapa  parameter  darah lainnya seperti hemoglobin. Nilai sel darah me- rah  selama  penelitian  untuk  semua  perlakuan
berturut-turut sebesar 1,59×10 6 sel mm -3 , 1,72× 10 6 sel  mm -3 ,  dan  1,79x10 6 sel  mm -3 .
Kandungan  sel  darah  merah  selama  perlakuan meningkat jika dibandingkan dengan nilai awal sebelum perlakuan yakni sebesar 1,56 × 10 6 sel mm -3 . Nilai ini masih berada pada batas normal sel darah merah ikan sidat. Ponsen et al. (2009) menyatakan  bahwa  nilai  sel  darah  merah  ikan sidat  sebesar  2,413×10 6 sel  mm -3 .  Selain  itu Andayani et  al. (2009) menyatakan bahwa ikan sidat  ukuran  1–2  g  memiliki  kadar  eritrosit 2,0×106  sel  mm -3 sedangkan  ikan  sidat  beru- kuran 204,1 g memiliki kadar eritrosit 3,4×106 sel  mm -3 .  Hasil  analisis  ragam  menunjukkan bahwa  perlakuan  tidak  memberikan  pengaruh yang  nyata  terhadap  nilai  sel  darah  merah (P>0,05).
Insang merupakan salah satu organ penting dalam  fisiologi  ikan  karena  bagian  ini merupakan  bagian  utama  dalam  proses pertukaran  gas,  pengaturan  ion  dan  kerja osmotik  serta  keseimbangan  asam-basa.  Selain itu,  insang  berperan  dalam  ekskresi  nitrogen terutama amonia (Evans et al. 2005, Mistry et al.
2001,  Mumford et  al. 2007).  Pada  ikan  sidat,
struktur  lengkung  insang,  filamen  dan  lamela memiliki  bentuk  yang  sesuai  dengan  ikan teleostei  pada  umumnya  (Fontaine et  al. 1995,
Perry  1997,  Tesch  2003,  Moron et  al. 2009).
Insang  terdiri  atas  filamen  yang  dilapisi  oleh epitel tebal yang berisi neuroepitel, klorida dan sel  lendir.  Setiap  filamen  memiliki  dua  baris lamela sekunder (Tesch 2003).
Hasil  analisis  histologi  insang  dan  kulit (Gambar 1) menunjukkan bahwa struktur insang elver  ikan  sidat  sebelum  perlakuan  dalam kondisi  normal.  Berdasarkan  Gambar  1  terlihat bahwa  perlakuan  C  tidak  menunjukkan  per- ubahan  struktur  pada  insang.  Ikan  sidat  pada
perlakuan  A  dan  B  menunjukkan  hasil  yang berbeda,  insang  mengalami  pemendekan  sel lamela  (hipoplasia)  dan  beberapa  lamela menyatu (fusi  lamela) (perlakuan A, Gambar 1 C).  Hal  ini  dapat  terjadi  karena  perlakuan ketinggian  air  pada  perlakuan  A  dan  perlakuan B  memberikan  akses  langsung  terjadinya  pa- paran  udara  pada  tubuh  ikan  sidat.  Ikan  sidat yang  sebagian  atau  seluruh  tubuhnya  bersen- tuhan langsung dengan udara dalam waktu yang cukup lama menyebabkan terjadinya perubahan struktur  insang.  Hal  ini  terjadi  karena  ikan berada  pada  kondisi  hiperkapnia,  yaitu tekanan karbondioksida  meningkat  sehingga  pertukaran gas  menjadi  tidak  stabil  dan  terbatas  antara  di dalam  dan  di  luar  sel.  Cruz-neto  &  Steffensen (1997)  melaporkan  bahwa  tingkat  konsumsi oksigen  ikan  sidat Anguilla  anguilla menurun dari  67  mLO 2 kg -1 h -1 ke  50.8  mLO 2 kg -1 h -1 seiring meningkatnya tekanan karbondioksida di luar  tubuh  dari  10  menjadi  40  mmHg.  Pem- batasan  pertukaran  gas  di  dalam  dan  di  luar menyebabkan peningkatan CO 2 secara bertahap dan  menyebabkan  pengasaman  darah  (Hyde  & Perry  1987,  Hyde et  al. 1987).  Berg  &  Steen
(1965) in Lefevre et  al. (2016)  menunjukkan bahwa ketika ikan sidat berada di dalam air 90% oksigen  diserap  menggunakan  insang,  semen- tara ketika ikan sidat berada di luar air,  sekitar dua  pertiga  dari  penyerapan  oksigen  meng- gunakan kulit.
Struktur  kulit  ikan  sidat  pada  umumnya terdiri  atas  3  lapisan  utama  yakni  lapisan  epi- dermis,  dermis,  dan  subkutis  (Caruso et  al. 2010).  Ikan  sidat  memiliki  struktur  kulit  yang tebal,  baik  pada  bagian  epidermis  maupun bagian  ujung  corium.  Kulit  tebal  tersebut banyak  ditemukan  pada  ikan  sidat  di  perairan laut,  sedangkan  ketika  ikan  sidat  berada  di
perairan  tawar,  maka  struktur  kulit  cenderung lebih  tipis  (Tesch  2003).  Jakubowski  (1960) in Tesch  (2003)  melaporkan  bahwa  ikan  sidat dengan  struktur  kulit  yang  tebal  memberikan kemampuan baginya dalam penyerapan oksigen langsung  dari  udara  sehingga  dapat  memenuhi kebutuhan oksigen secara cepat.
Sama  halnya  dengan  insang,  perubahan struktur  kulit  juga  terjadi  ketika  ikan  sidat dipelihara  dengan  ketinggian  air  yang  rendah (perlakuan  A  dan  B).  Kulit  mengalami  peni- pisan  pada  bagian  epidermis  sel  kulit  (krenasi) dan  semakin  sedikit  volume  air  (perlakuan  A) penipisan  sel  tersebut  menjadi  semakin  ber- kembang dan sel kulit pada bagian luar hilang. Hal  ini  diduga  ikan  sidat  menggunakan  kulit sebagai  kompensasi  paparan  udara  dalam menjaga kondisi agar dapat bertahan hidup. Ikan sidat  memiliki  struktur  kulitnya  cukup  tebal dibandingkan  dengan  ikan  lain  dan  memiliki kapasitas yang cukup untuk sekresi lendir serta membantu  menjaga  kulit  tetap  lembap.  Ketika berada  di  luar  air,  kulit  mampu  menjaga keseimbangan  O 2 dengan  melakukan  pengam- bilan  oksigen  kulit  (Berg  &  Steen  1965)  dan mengurangi  penyerapan  O 2 dari  insang (Lemoigne et  al. 1986).  Selain  parameter  ter- sebut,  nilai  kualitas  air  ikan  sidat  yang  terdiri atas  suhu,  pH  dan  oksigen  terlarut  masing- masing  berkisar  antara  26-29 o C;  6,5-7,9  dan 5,6-8,4  mg  L -1 .  Nilai  parameter  kualitas  air  ini masih  berada  pada  kondisi  optimal  untuk pembesaran ikan sidat.

## Simpulan
Ikan  sidat  mampu  bertahan  hidup  dengan sistem kering selama 3-4 hari, dan mampu ber- tahan  hidup  dengan  sistem  lembap  selama  6-7 hari.  Sistem  pemeliharaan  terbaik  elver  ikan
sidat  ( A.  bicolor  bicolor )  terdapat  pada  peme- liharaan  sistem  basah  dengan  tinggi  air  100% dari tinggi badan.

## Daftar pustaka
Affandi  R,  Budiardi  T,  Wahju  RI,  Taurusman AA. 2013.  Pemeliharaan ikan sidat dengan sistem  air  bersirkulasi. Jurnal Ilmu Pertanian Indonesia , 18(1): 55-60 Andayani S, Marsoedi, Sanoesi E, Wilujeng AE, H  Suprastiani.  2009. Profil  Hematologi Beberapa Spesies Ikan Air Tawar Budidaya . UB Press, Malang.
Angka  SL,  Mokoginta  I,  Hamid  H.  1990.
Anatomi  dan  Histologi  Banding  Beberapa Ikan  Air  Tawar  yang  Dibudidayakan  di Indonesia. Departemen  Pendidikan  dan Kebudayaan.  Direktorat  Jenderal  Pendi- dikan  Tinggi.  Institut  Pertanian  Bogor. Bogor. 146 p.
Baras  E,  Raynaud  T, Slembrouck  J,  Caruso  D, Cochet  C,  Legendre  M.  2011.  Interactions between  temperature  and  size  on  the growth,  size  heterogeneity,  mortality,  and cannibalism in cultured larvae and juveniles of  the  Asian  catfish Pangasianodon hypophthalmus (Sauvage). Aquaculture
Research , 42(2): 260– 276
Berg  T,  Steen  JB.  1965.  Physiological mechanisms for aerial respiration in the eel.
Comparative Biochemistry and Physiology , 15(4):469–484
Blaxhall  PC,  Daishley  KW.  1973.  Routine haematological  methods  for  use  with  fish blood. Journal  of  Fish  Biology ,  5(6):  771- 781.
Caruso G, Maricchiolo G, Micale V, Genovese L,  Caruso  R,  Denaro  MG.  2010. Physiological responses to starvation in the European eel ( Anguilla anguilla ): effects on haematological,  biochemical,  non-specific immune  parameters  and  skin  structures. Fish Physiology and Biochemistry ,
36(1):71–83
Cruz-neto AP, Steffensen JF. 1997. The effects of  acute  hypoxia  and  hypercapnia  on oxygen  consumption  of  the  freshwater European  eel. Journal  of  Fish  Biology 50(4): 759–769
Diansyah  S,  Budiardi  T,  Sudrajat  AO.  2014. Kinerja  pertumbuhan Anguilla  bicolor bicolor bobot  awal  3  g  dengan  kepadatan berbeda. Jurnal  Akuakultur  Indonesia , 13(1): 46-53.
Djajasewaka  H.  2003.  Pengaruh  pemberian pakan buatan dalam bentuk pelet, pasta dan campuran  keduanya  terhadap  pertumbuhan benih sidat ( Anguilla bicolor ). In : Budiman (editor). Prosiding  Sumber  daya Perikanan Sidat  Trofik . UPT Baruna Jaya, BPPT.  pp. 55-58
Evans DH, Piermarini PM, Choe KP. 2005. The multifunctional  fish  gill:  dominant  site  of gas  exchange,  osmoregulation,  acid-base regulation,  and  excretion  of  nitrogenous waste. Physiological  Reviews, 85(1):  97– 177
[FAO]  Food  and  Agriculture  Organization. 2018. FAO Yearbook, Fishery and Aquaculture Statistic 2016 . Rome. 108 p. Fange  R.  1976.  Gas  exchange  in  the swimbladder. In :  Hughes  GM.  (ed.) Respiration  of  Amphibious  Vertebrates. Academic Press. London. pp. 189-211.
Fontaine YA, Pisam M, Le Moal C, Rambourg A.  1995.  Silvering  and  gill  “mitochondria- rich cells" in the eel, Anguilla anguilla . Cell Tissue Research , 281(3): 465–471.
Fekri  L,  Affandi  R,  Budiardi  T.  2014.  Tingkat pemberian  pakan  sidat Anguilla  bicolor bicolor :  ukuran  1–2  g. Jurnal  Akuakultur Indonesia , 13(1): 21–27.
Fekri  L,  Affandi  R,  Rahardjo  MF,  Budiardi  T, Simanjuntak  CPH,  Fauzan  T,  Indrayani. 2018.  The  effect  of  temperature  on  the physiological  condition  and  growth performance  of  freshwater  eel  elver Anguilla  bicolor  bicolor (McClelland, 1844). Jurnal  Akuakultur  Indonesia , 17(2): 181-190.
Fekri  L,  Affandi  R,  Rahardjo  MF,  Budiardi  T, Simanjuntak  CPH.  2019.  Pertumbuhan elver Anguilla  bicolor McClelland,  1844 pasca  pembantutan  yang  dipelihara  di media  semi  alami. Jurnal Iktiologi Indonesia , 19(2): 243-257.
Ferguson  RA,  Tufts  BL.  1992.  Physiological effects of brief air exposure in exhaustively exercised  rainbow  trout  ( Oncorhynchus mykiss ):  implications  for  “catch  and release”  fisheries. Canadian  Journal  of
Fisheries  and  Aquatic  Sciences ,  49(6):
1157–1162. Forster  ME.  1981.  Oxygen  consumption  and apnoea  in  the  shortfin  eel, Anguilla australis schmidtii . New Zealand Journal of Marine  and  Freshwater  Research ,  15(1):
85-90
Goddard  S.  1996. Feed  Management  in Intensive  Aquaculture .  Chapman  and  Hall.
New York. 194 p.
Graham  JB  1997. Air-breathing fishes . Evolution, diversity and adaptation . Academic Press. San Diego. Handajani H, Widanarni, Budiardi T, Setiawati M,  Sujono.  2018.  Phytoremediation  of  Eel ( Anguilla bicolor bicolor ) rearing wastewater using amazon sword ( Echinodorus amazonicus) and  water jasmine  ( Echinodorus  palaefolius ). Omni- Akuatika , 14(2): 43 – 51.
Harianto  E,  Budiardi  T,  Sudrajat  AO.  2014. Growth  performance  of  7-g Anguilla bicolor  bicolor at  different  density. Jurnal Akuakultur Indonesia , 13(2): 120–131.
Herianti  I.  2005.  Rekayasa  lingkungan  untuk memacu perkembangan ovarium ikan sidat Anguilla bicolor . Jurnal Oseanologi Limnologi Indonesia , 37(5): 25–41.
Huisman  EA.  1987. Principles  of  Fish
Production .  University  Press.  Wageningen Agricultural Netherland. 296 p.
Hyde DA, Perry SF. 1987. Acid-base and ionic regulation  in  the  American  eel  ( Anguilla rostrata )  during  and  after  prolonged  aerial exposure-branchial  and  renal  adjustments.
Journal  of  Experimental  Biology, 133(1): 429-447.
Hyde  DA,  Moon  TW,  Perry  SF.  1987. Physiological  consequences  of  prolonged aerial  exposure  in  the  American  eel,
Anguilla  rostrata -blood  respiratory  and acid-base  status. Journal  of  Comparative Physiology  B-Biochemical  Systemic  and Environmental  Physiology, 157(5):  635- 642.
[KKP]  Kementerian  Kelautan  dan  Perikanan.
2017. Marine  and  Fishery  Statistics.  Data in 2014 . KKP RI, Jakarta 63 p.
Lefevre  S,  Bayley  M,  McKenzie  DJ.  2016. Measuring  oxygen  uptake  in  fishes  with
bimodal  respiration. Journal  of  Fish Biology, 88(1): 206–231.
Lemoigne J, Soulier P, Peyraudwaitzenegger M, Peyraud  C.  1986.  Cutaneous  and  gill  O 2 uptake  in  the  European  Eel  ( Anguilla anguilla  L ) in relation to ambient PO 2 , 10-
400  Torr. Respiration  Physiology, 66(3): 341-354.
Luo M, Guan R, Li Z, Jin H. 2013. The effects of  water  temperature  on  the  survival, feeding,  and  growth  of  the  juveniles  of
Anguilla  marmorata and Anguilla  bicolor pacifica . Aquaculture , 400-401: 61–64.
Mistry AC, Honda S, Hirata T, Kato A, Hirose S. 2001. Eel urea transporter is localized to chloride  cells  and  is  salinity  dependent.
American Journal of Physiology- Regulatory,  Integrative  and  Comparative
Physiology, 281(5): 1594-1604.
Moron  SE,  de  Andrade,  Arilson,  Narciso
Fernandez MA. 2009. Response of mucous cells  of  the  gills  of  traíra  ( Hoplias malabaricus )  and  jeju  ( Hoplerythrinus unitaeniatus )  (Teleostei: Erythrinidae )  to hypo-and  hyper-osmotic  ion  stress.
Neotropical Ichthyology , 7(3): 491-498.
Mott JC. 1951. The gross anatomy of the blood vascular  system  of  the  eel
Anguilla anguilla.  Proceedings  of  the  Zoological Society . London 120: 503-518.
Mumford S, Heidel J, Smith C, Morrison J, Mac Connell B, Blazer V. 2007. Fish  Histology and  Histopathology .  U.S.  Fish  &  Wildlife
Service-National  Conservation  Training
Center.
〈 https://nctc.fws.gov/resources/course- resources/fish-histology/ 〉 .
Nielsen  T,  Prouzet  P.  2008.  Capture-based aquaculture  of  the  wild  European  eel ( Anguilla  anguilla ). In :  Lovatelli  A  & Holthus  PF    (eds).  Capture-based aquaculture.  Global  overview. FAO
Fisheries Technical Paper . No. 508. Rome, FAO. pp. 141–168. NRC.  2011. Nutrient Requirement of Warmwater Fishes and Shellfishes . National  Academy  of  Science  Press. Washington DC.
Perry SF. 1997. The chloride cells: structure and function  in  the  gills  of  freshwater    fishes.
Annual  Review  of  Physiology ,  59(1):  325–
347.
Pike  C,  Crook  V,  Gollock  M.  2019. Anguilla australis .  The  IUCN  Red  List  of Threatened Species. UK. 31 p.
Ponsen  S,  Narkkong  NA,  Pamok  S, Aengwanich  W.  2009.  Comparative hematological  values,  morphometric  and morphological observation of the blood cell in  capture  and  culture  asian  eel,
Monopterus  albus (Zuiew). American Journal of Animal and Veterinary Sciences,
4(2): 32-36.
Sahan A, Altun T, Cevik F, Cengizler I, Nevsat
E,  Ercurment  Genc.  2007.  Comparative study of some haematological parameters in European  eel Anguilla  anguilla L.  (1758) caught  from  different  regions  of  Ceyhan river  (Adana,  Turkey). Ege  Journal  of Fisheries  and  Aquatic  Sciences, 24(1-2):
167–171.
Sandrayani,  Lumbessy  SY,  Damayanti  AA. 2013.  Pengaruh  media  pengisi  terhadap kelangsungan  hidup  udang  vaname ( Litopenaeus  vannamei) pada  transportasi sistem  kering. Jurnal  Perikanan  Unram, 1(2): 20-27.
Scabra  AR,  Budiardi  T,  Djokosetiyanto  D. 2016.  Kinerja  produksi Anguilla  bicolor
bicolor dengan  penambahan  CaCO 3 pada media  budidaya. Jurnal Akuakultur Indonesia,
15(1): 1–7.
Setiawati  M,  Mokoginta  I,  Suprayudi  MA, Manalu  W.  2007.  Pengaruh  penambahan mi-neral Fe pada pakan ikan terhadap status kesehatan  ikan  kerapu  bebek. Jurnal  Per- ikanan dan Kelautan , 12(1): 55-63.
Shiraishi  H,  Crook  V.  2015. Eel  Market
Dynamics: An Analysis of Anguilla Production,  Trade  and  Consumption  in
East Asia. Traffic, Tokyo.
Steel  GD,  Torrie  JH.  1981.  Prinsip-prinsip  dan Prosedur  Statistika . PT.  Gramedia  Pustaka Utama. Jakarta, 747 p.
Suski  CD,  Killen  SS,  Cooke  SJ,  Kieffer  JD, Philipp  DP,  Tufts  BL.  2004.  Physiological significance  of  the  weight-in  during  live- release angling tournaments for largemouth bass. Transactions of the American Fisheries Society , 133(6): 1291–1303. Svobodova  Z,  Vykusova  B,  Modra  H, Jarkovsky J, Smutna M, 2006. Haematological  and  biochemical  profile  of harvest-size  carp  during  harvest  and  post-
harvest  stroge. Aquaculture  Research ,
37(10): 959-965.
Taufiq  N,  Definta  VM,  Ario.  2017.    Pengaruh volume  air  pada  media  terhadap pertumbuhan  panjang  dan  berat  ikan  sidat (Anguilla bicolor bicolor) . Buletin Oseanografi Marina , 6(2): 117–121.
Tesch  FW.  2003. The  Eel. Blackwell  Science Ltd. Oxford.
Thompson  LA,  Cooke  SJ,  Donaldson  MR, Hanson  KC,  Gingerich  A,  Klefoth  T, Arlinghaus  R.  2008.  Physiology,  behavior, and  survival  of  angled  and  air-exposed largemouth  bass. North  American  Journal of  Fisheries  Management ,  28(4):  1059- 1068. Tseng  KF,  Wu  KL.  2004.  The  ammonia removal  cycle  for  a  submerged  biofilter used  in  a  recirculating  eel  culture  system . Aquacultural Engineering , 31(1-2): 17–30.
Tsukamoto K, Kuroki M. (ed.). 2014.
Eels  and humans . Humanity  and  the  sea .  Springer. Japan. 186 p.
van Waarde A,  van den Thillart  G, Kesbeke F. 1983. Anaerobic energy metabolism of the European Eel, Anguilla-Anguilla l. Journal of  Comparative  Physiology 149(4):  469- 475.
Wedemeyer  GA,Yasutake  WT.  1977.  Clinical methods  for  the  assessment  of  the  effect environmental  stres  on  fish  health.  US Department  of  Interior  Fish  and  Wildlife Service Technical Paper 89: 1–17.