Research Article

## UNPAD

## ANTIOXIDANT ACTIVITIES OF ETHYL ACETATE EXTRACT OF

## KESAMBI ( Schleichera oleosa L.) WITH DPPH METHOD
Nursamsiar 1* , Khairuddin 2 , Marwati 2 , Nur Khairi 3 , dan Syamsu Nur 1
1Bagian Kimia Farmasi,Sekolah Tinggi Ilmu Farmasi Makassar, Makassar, Indonesia, 2Bagian Biologi Farmasi Sekolah Tinggi Ilmu Farmasi Makassar, Makassar, Indonesia 3Bagian Teknologi Farmasi Sekolah Tinggi Ilmu Farmasi Makassar, Makassar, Indonesia Submitted 27 March 2022; Revised 15 January 2023; Accepted 18 January 2023; Published 01 February 2024 *Corresponding author: n.siar@yahoo.co.id
Abstract Kesambi ( Schleichera oleosa ) is one of the plants from Indonesia that has the potential as a medicine- active compound that is a potent antioxidant. The purpose of this study was to determine the potential of various parts of kesambi as an antioxidant using the DPPH scavenger method. Samples were extracted in ethyl acetate solvents by the maceration method. The identification of the class of compounds was performed  by  phytochemical  screening  using  chemical  reagents  and  the Antioxidant  activity  was evaluated with DPPH free radical using a UV-Vis spectrophotometry detector at 515 nm. The results of the phytochemical screening showed that all ethyl acetate extracts from various parts of the plant contained flavonoid, phenolic, and tannin compounds. The results of antioxidant activity tests using the DPPH method showed the lowest IC50 value was leaf extract (5.4952 μg/mL) compared to bark (14.3621  μg/mL),  root  (43.4159  μg/mL),  pericarp  (159.8782  μg/mL)  dan  mesocarp  (167.2912  μg/ mL) respectively.  The existence of this bioactivity profile can provide additional information on the strength of antioxidants in various parts of the kesambi plant which have not been reported in previous studies so that it can be developed for further research.
Key words: Antioxidant, Free radical, Kesambi, Schleichera oleosa
AKTIVITAS ANTIOKSIDAN EKSTRAK ETIL ASETAT TANAMAN KESAMBI ( Schleichera oleosa L.) DENGAN METODE DPPH

## Abstrak
Kesambi  ( Schleichera oleosa )  merupakan  salah  tanaman  asli  Indonesia  yang  berpotensi  sebagai obat dan memiliki senyawa aktif yang berpotensi sebagai antioksidan. Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui potensi berbagai bagian tanaman sebagai antioksidan dengan metode DPPH. Simplisia diekstraksi dengan metode maserasi menggunakan pelarut etil astetat. Identifikasi golongan senyawa dilakukan  dengan  skrining  fitokimia  menggunakan  reagen  kimia  sedangkan  pengujian  aktivitas antioksidan dilakukan dengan metode peredaman radikal DPPH menggunakan spektrofotometer pada panjang gelombang 515 nm. Hasil skrining fitokimia menunjukkan bahwa semua ekstrak etil asetat dari berbagai bagian tanaman mengandung senyawa flavonoid, fenolik dan tannin. Pengujian aktivitas menunjukkan  ekstrak  etil  asetat  daun  kesambi  memiliki  aktivitas  antioksidan  paling  baik  dengan nilai IC50 5,4952 μg/mL, dibandingkan dengan kulit batang (14,3621 μg/mL), akar (43,4159 μg/mL), kulit buah (159,8782 μg/mL) dan daging buah (167,2912 μg/mL). Ekstrak etil asetat berbagai bagian tanaman kesambi memiliki aktivitas antioksidan dengan urutan paling baik yaitu daun, kulit batang, akar, kulit buah, dan daging buah. Adanya profil bioaktivitas tersebut dapat memberikan informasi tambahan terhadap kekuatan atioksidan pada berbagai bagian tanaman kesambi yang belum dilaporkan pada penelitian sebelumnya sehingga dapat dikembangkan untuk penelitian lebih lanjut.
Kata Kunci: Antioksidan, Radikal bebas, Kesambi, Schleichera oleosa

## 1.  Pendahuluan
Radikal bebas merupakan suatu senyawa yang memiliki satu atau lebih elektron tidak berpasangan yang secara alamiah merupakan produk  samping  dari  proses  pembentukan energi di dalam tubuh. Radikal bebas dalam jumlah  sedikit  dibutuhkan  tubuh  untuk membantu  sel  darah  putih  membunuh kuman.  Apabila  terlalu  banyak,  mereka mampu menyerang sel-sel tubuh yang sehat, menyebabkan mereka kehilangan struktur dan fungsinya.  Radikal  bebas  dapat  bersumber dari dalam tubuh sebagai bagian dari proses metabolisme  maupun  luar  tubuh  yang bersumber dari lingkungan seperti polusi dan radiasi. 1 Radikal  bebas  berkontribusi  pada beberapa  gangguan  fisiologi  pada  manusia termasuk ateroklerosis, radang sendi, iskemia, gastritis,  kanker  dan  inflamasi. 2 Umumnya manusia  pada  keadaan  normal  memiliki antioksidan dalam tubuhnya, tetapi pemaparan radikal  bebas  yang  berlebihan  tidak  mampu ditahan oleh tubuh, maka diperlukan asupan antioksidan  dari  luar  (eksogen). 3 Beberapa senyawa  antioksidan  sintesis  seperti  BHA dan  BHT  pada  umumnya  digunakan untuk  mencegah  paparan  dari  radikal namun  penggunaan  dalam  jangka  panjang diduga  dapat  memberikan  efek  samping karsinogenik  sehingga  penggunaanya  perlu dibatasi.  Sebagai  alternatif  agar  asupan antioksidan  dari  luar  tetap  terpenuhi  maka dapat  digunakan  senyawa  antioksidan  alami yang  berasal  dari  bahan  alam  dengan  efek samping yang minimal. 4 Salah satu sumber antioksidan  eksogen  melalui  pemanfaatan tanaman bahan alam seperti kesambi.
Kesambi  ( Schleichera oleosa L.) merupakan  keluarga Sapindaceae yang secara tradisional digunakan untuk mengobat beberapa  penyakit.  Berbagai  bagian  dari kesambi  seperti  daun,  buah,  dan  kayu  telah digunakan  oleh  masyarakat  di  Jawa  untuk mengobati berbagai penyakit seperti penyakit kulit,  rematik,  disentri,  jerawat,  sakit  perut, dan sengatan ular. 5,6,7,8,9 Pemanfaatan kesambi sudah dikenal sejak dulu. Dibidang industri, minyak  dari  buah  kesambi  dapat  digunakan sebagai  sumber  biodiesel. 10 Beberapa penelitian  yang  telah  dilakukan  menyatakan
kandungan  metabolit  primer  dari  kesambi adalah gula, asam amino, protein, dan klorofil, sedangkan kandungan metabolit sekundernya adalah alkaloid, terpenoid, senyawa fenolik, tanin, flavonoid, dan lain-lain. 11
Daun  Kesambi  diketahui  mengandung senyawa flavonoid dan fenolik, 12 kulit batang kesambi  mengandung  senyawa  fenolik 13 yang  terdiri  dari 1,2-Benzenedicarboxylic acid, diisooctyl ester dan squalene . 14 Profil histokimia  yang  diamati  pada  bagian abaksial  daun  kesambi  ( Schleichera oleosa ) menunjukkan  hasil  positif  adanya  senyawa terpenoid,  alkaloid,  flavonoid,  fenol,  tanin dan  lipofil. 15 Penggunaan  kayu  kesambi  di daerah  Timor  Indonesia  digunakan  untuk menekan laju pertumbuhan bakteri E. coli . 16 Penelitian  tentang  antioksidan,  antibakteri dan uji toksisitas kulit batang pohon kesambi menunjukkan  bahwa  ekstrak  etil  asetat memiliki  aktivitas  antioksidan  ( IC50 7,723 ppm)  yang  lebih  baik  dibandingkan  dengan ekstrak  metanol  ( IC50 7,801  ppm),  dan ekstrak n-heksan ( IC50 8,568 ppm). Aktivitas antibakteri menunjukkan adanya kemampuan untuk  menghambat  pertumbuhan  bakteri Streptococcus aureus dibandingkan  bakteri Escherichia coli pada konsentrasi 10.000 ppm, dan  hasil  uji  toksisitas  menunjukkan  bahwa ekstrak  etil  asetat  memiliki  aktivitas  yang lebih  baik  (LC 50 305,17  ppm)  dibandingkan ekstrak  n-heksan  (LC 50 374,96  ppm)  dan ekstrak metanol (LC 50 431,26 ppm). 17 Beradasarkan  dari  data  ilmiah  yang telah  dilaporkan  sebelumnya,  pada  studi  ini dilakukan  skrining  bioaktivitas  antioksidan dari berbagai bagian tanaman kesambi dengan menggunakan cairan pengekstraksi etil asetat. Etil asetat merupakan pelarut semi polar yang secara mekanisme mampu menarik senyawa yang  bersifat  polar  maupun  semi  polar.  Hal ini telah didukung data ilmiah pada penelitian sebelumnya 18 yang  meunjukkan  bahwa ekstrak etil asetat memberikan aktivitas yang sangat  kuat  dalam  menghambatan  aktivitas radikal bebas (IC 50 <50 µg/mL).
2.  Metode 2.1.  Alat Alat  yang  digunakan  dalam  penelitian
adalah maserator, perangkat alat gelas (Iwaki, Pyrex),  bunsen,  cawan  porselin,  mikropipet (Dragon  lab),  oven  (Memmert  UN-30), vial, rotary evaporator (Buchi,  R-300), spektrofotometer UV-Vis (Shimadzu®-1800), neraca analitik ( Mettler toledo ).
2.2.  Materials
Bahan  tumbuhan  yang  digunakan dalam  penelitian  ini  adalah  kulit  batang, akar,  daun,  daging  buah  dan  kulit  buah kesambi  ( Schleichera oleosa )  yang  diambil dari  Kabupaten  Gowa  Sulawesi  Selatan. Bahan  kimia  yang  digunakan  antara  lain vitamin  C  (Merck, Germany ),  2,2-difenil-1- pikrilhidrasil (DPPH) (Sigma Aldrich, USA), etanol  96%,  etil  asetat  (Merck, Germany ), aquadest (waterone), HCl (Merck, Germany ), serbuk Mg (Merck, Germany ), FeCl3 (Merck, Germany ),  amoniak,  pereaksi  dragendorf, pereaksi  mayer,  pereaksi  wagner  dengan grade  teknis,  H2SO4  (Merck, Germany ), asam asetat anhidrat (Merck, Germany ), dan kloroform (JT-Baker).
2.3.  Metode
Rangkaian  penelitian  yang  dilakukan meliputi preparasi sampel, ekstraksi, skrining fitokimia dan pengujian aktivitas antioksidan dengan metode DPPH.
2.3.1. Preparasi sampel Sampel  tanaman  diperoleh  dari  dari Desa  Sicini,  Dusun  Siriya,  Kecamatan Parigi,  Kabupaten  Gowa,  Provinsi  Sulawesi Selatan. Identifikasi terhadap spesies tanaman Kesambi dilakukan di Laboratorium Biologi, Universitas  Negeri  Makassar  dengan  nomor specimen  051/SKAP/2018.  Sampel  dicuci dengan  air  mengalir  untuk  menghilangkan kotoran  yang  menempel  pada  sampel kemudian  dilakukan  sortasi  basah.  Sampel kemudian dirajang untuk memperkecil ukuran dan dikeringkan dalam oven simplisia.
2.3.2. Ekstraksi Simplisia  sebanyak  250  g  diekstraksi dengan  metode  maserasi  menggunakan pelarut etil asetat dengan perbandingan 1:10. Simplisia  dimasukkan  ke  dalam  wadah  dan
ditambahkan  pelarut  kemudian  ditempatkan pada suhu ruang dan ditempat gelap selama 3 x 24 jam dan sewaktu-waktu diaduk. Setelah 3  x  24  jam  kemudian  campuran  difiltrasi untuk  memisahkan  residu  dan  filtrat.  Filtrat yang diperoleh kemudian dipekatkan dengan rotary  evaporator  hingga  diperoleh  ekstrak kental.  Rendemen  ekstrak  dihitung  dengan persamaan:
Rendemen = berat ekstrak/berat simplisia x 100%

## 2.3.3. Skrining Fitokimia
Skrining fitokimia golongan senyawa dilakukan pada ekstrak kental.
1.

## Alkaloid
Ekstrak  sebanyak  ±  1  g  dimasukkan ke  dalam  tabung  reaksi,  ditambahkan  2  mL HCl 2 N kemudian dibagi dalam tiga tabung reaksi. Tabung pertama ditambahkan pereaksi mayer  akan  menghasilkan  endapan  putih/ kuning,  pada  tabung  kedua  ditambahkan pereaksi wagner akan menghasilkan endapan coklat  hitam,  dan  pada  tabung  ketiga ditambahkan  5  mL  kloroform  dan  amoniak, kemudian ditambahkan pereaksi Dragendorff akan menghasilkan endapan kemerahan yang menunjukkan positif mengandung alkaloid. 18

## 2. Flavonoid
Ekstrak ditimbang ± 1 g dan dimasukkan ke dalam tabung reaksi. Ekstrak ditambahkan serbuk magnesium dan 2-4 tetes HCl pekat, kemudian  campuran  dikocok.  Warna  jingga yang  terbentuk  menunjukkan  adanya flavonoid  golongan  flavonol  dan  flavanon, sedangkan  warna  mencolok  seperti  merah, kuning,  atau  coklat  menunjukkan  adanya flavonoid. 3

## 3. Terpenoid & Steroid
Ekstrak  sebanyak  1  g  ditambahkan  5 mL  larutan  kloroform:air  (1:1)  dan  dikocok kuat.  Hasil  ekstrak  kloroform  dipisahkan dan  dimasukkan  ke  dalam  tabung  reaksi, kemudian ditambahkan 10 tetes asam asetat anhidrat  dan  3  tetes  asam  sulfat  pekat.  Jika mengalami  perubahan  warna  merah  atau coklat  menunjukkan  adanya  terpenoid
(triterpenoid),  sedangkan  perubahan  warna menjadi  biru,  ungu  atau  hijau  menunjukkan adanya steroid. 19

## 4. Uji Saponin
Ekstrak sebanyak ± 1 g dimasukkan ke dalam tabung reaksi dan diekstraksi dengan air panas, dikocok kuat, kemudian ditambahkan HCl 2 N dan dikocok kuat kembali. Saponin ditunjukkan  jika  terbentuk  buih  yang  tidak hilang  setelah  didiamkan  dalam  waktu  10 menit. 19

## 5. Uji Fenolik
Ekstrak  sebanyak  ±  1  g  dimasukkan ke  dalam  tabung  reaksi  dan  ditambahkan FeCl3 5% sebanyak 2–3 tetes. Senyawa fenol ditunjukkan jika terjadi perubahan warna biru kehitaman. 19

## 6. Uji Tannin
Ekstrak  sebanyak  ±  1  g  dimasukkan ke dalam tabung reaksi dan ditambahkan 1-2 tetes  FeCl3  1%.  Senyawa  tanin  ditunjukkan jika terjadi perubahan warna hijau kehitaman, ungu, biru, atau hitam yang kuat. 19
2.3.1. Uji Aktivitas Antioksidan
1.  Pembuatan Larutan DPPH 0,4 mM DPPH  kristal  ditimbang  sebanyak 0,0157  g  dilarutkan  dengan  etanol  absolut dalam  labu  tertukur  dan  dicukupkan volumenya hingga 100 ml. 20
2.  Pembuatan larutan sampel
Ekstrak  etil  asetat  berbagai  bagian tanaman kesambi ( Schleichera oleosa ) dibuat larutan induk dengan konsentrasi 500 µg/mL. Dari  larutan  induk  kemudian  dibuat  larutan dengan lima seri konsentrasi.
3.  Pembuatan larutan pembanding vitamin
C Larutan  induk  vitamin  C  500  µg/mL dibuat  dengan  cara  menimbang  vitamin  C sebanyak  5  mg  dan  dilarutkan  dengan  air suling  bebas  CO2,  dicukupkan  volumenya dengan  etanol  96%  hingga  10  ml.  Dibuat dalam variasi konsentrasi yaitu 1, 2, 3, 4, dan 5 µg/mL.
4.  Pengukuran serapan larutan sampel dan Vitamin C Larutan  sampel  dan  vitamin  C  dari berbagai konsentrasi masing-masing diambil 1 mL ditambahkan 1 mL larutan DPPH lalu divorteks  dan  diinkubasi  selama  30  menit. Sisa DPPH ditentukan secara spektrofotometri pada panjang gelombang 515 nm.

## 5. Pengukuran Larutan Sampel
Larutan  sampel  sebanyak  1  mL dengan  berbagai  konsentrasi  masing-masing ditambahkan  1  mL  larutan  DPPH  lalu divorteks  dan  diinkubasi  selama  30  menit dan  diukur  absorbansinya  dengan  panjang gelombang 515 nm.
6.  Hasil dan Pembahasan Kesambi  ( Schleichera oleosa L.) merupakan  tanaman  pohon  hutan  tropis dari  famili Sapindaceae yang  banyak dimanfaatkan  masyarakat.  Secara  morfologi pada  tanaman  ini  memungkinkan  adanya kemiripan  bentuk  pada  spesies  tanaman lainnya.  Oleh  karena  itu  untuk  mengetahui identitas  tanaman  secara  pasti,  dilakukan determinasi  pada  tanaman  dan  diperoleh hasil  bahwa  sampel  yang  digunakan  dalam penelitian  ini  adalah  tanaman  kesambi  jenis Schleichera oleosa (Lour.)  Oken  famili Sapindaceae .  Pengolahan  sampel  melalui empat  tahap  yaitu  tahap  sortasi  basah, pencuci, perajangan dan pengeringan. Sortasi basah merupakan tahapan untuk memisahkan sampel  dari  kotoran. 21 Pencucian  dengan air  mengalir  untuk  membersihkan  sampel dari  kotoran  yang  menempel  dan  tahapan selanjutnya  adalah  tahapan  perajangan untuk memperkecil ukuran sampel sehingga akan  mempercepat  proses  pengeringan  dan mempermudah  komponen  bioaktif  yang terkandung  dalam  sampel  terlarut  kedalam cairan  penyari. 2 Tahap  terakhir  adalah pengeringan dilakukan dengan menggunakan oven  simplisia  suhu  50°C.  Pengeringan dilakukan  untuk  menghilangkan  kadar  air sehingga sampel tidak mengalami kerusakan dan  penurunan  mutu  walaupun  disimpan dalam waktu yang lama. 21
Ekstraksi  berbagai  bagian  tanaman kesambi  dilakukan  dengan  menggunakan cairan  penyari  etil  asetat  dengan  metode maserasi.  Pemilihan  penyari  etil  asetat berdasarkan beberapa penelitian sebelumnya telah  membuktikan  bahwa  penyari  yang paling efektif untuk mengekstraksi komponen kimia dalam tanaman kesambi adalah penyari yang bersifat semipolar seperti etil asetat. 10,15 Metode  ekstraksi  dilakukan  metode  dingin dengan maserasi untuk mencegah kerusakan komponen  senyawa  yang  terkandung  dalam sampel karena pemanasan.
Rendemen  yang  diperoleh  dari  proses ekstraksi  <10%  dengan  rendamen  terbesar diperoleh  pada  sampel  daun  sebesar  8,23% (tabel 1). Hasil pengujian skrining fitokimia dari kelima ekstrak bagian tanaman kesambi menunjukkan  bahwa  kelima  ekstrak mengandung  senyawa  golongan  flavonoid, fenolik  dan  tannin  serta  tidak  mengandung senyawa  golongan  saponin  dan  terpenoid (Tabel  2).  Hasil  tersebut  berbeda  dengan penelitian  yang  dilakukan  oleh 22 yang menunjukkan  bahwa  ekstrak  etanol  daun mengandung  golongan  senyawa  flavonoid, fenolik,  tannin,  saponin  dan  terpenoid.
Adanya  perbedaan  profil  kandungan  dapat dipengaruhi  oleh  berbagai  faktor  seperti, metode  ekstraksi  yang  digunakan,  pelarut pengekstraksi, dan lokasi tempat tumbuh dari kesambi. 23,24
Hasil  pengujian  aktivitas  antioksidan berdasarkan  kemampuan  sampel  dalam mereduksi  DPPH  secara  spektrofotometri. DPPH merupakan radikal sintetik yang larut dalam  pelarut  polar  seperti  metanol  dan etanol  yang  bersifat  stabil  dan  dapat  diukur intensitasnya  pada  panjang  gelombang 515  nm. 20 Prinsip  pengukuran  antioksidan secara  kuantitatif  menggunakan  metode DPPH  adalah  adanya  perubahan  intensitas warna  ungu  DPPH  yang  sebanding  dengan konsentrasi larutan DPPH tersebut. Perubahan  intensitas  warna  ungu  ini  terjadi karena adanya peredaman radikal bebas yang dihasilkan  oleh  bereaksinya  molekul  DPPH dengan atom hidrogen yang dilepaskan oleh molekul  senyawa  sampel  dan  menyebabkan terjadinya perubahan warna DPPH dari ungu menjadi  kuning.  Perubahan  warna  ini  akan memberikan  perubahan  absorbansi  pada panjang  gelombang  maksimum  DPPH  saat diukur  menggunakan  spektrofotometer  UV-
Tabel 1. Rendemen dari ekstrak etil asetat berbagai bagian tanaman Kesambi ( S.oleosa L.)
Bagian Tanaman Bobot simplisia (g) Bobot ekstrak Rendemen (%) Kulit Batang 250 10,10 4,04 Akar 250 6,30 2,52 Daun 250 20,57 8,23 Daging buah 250 3,00 1,20 Kulit Buah 250 2,70 1,08 Golongan senyawa Pereaksi Kesimpulan (+) / (-) Kulit Batang Akar Daun Kulit buah Daging buah Alkaloid Mayer - - + - - Wagner - - + - - Dragendrorf - - + - - Flavonoid Mg + HCl Pekat + + + + + Saponin HCl - - - - - Terpenoid dan Steroid Kloroform + Asam Asetat anhidrat + H2SO4 pekat - - - - - Fenolik FeCl3 + + + + + Tanin FeCl3 + + + + +
Tabel 2. Hasil skrining fitokimia Ekstrak Etil Asetat berbagai bagian tanaman Kesambi ( S.oleosa L.)
Vis  sehingga  akan  diketahui  nilai  aktivitas peredaman  radikal  bebas  yang  dinyatakan dengan nilai IC50. 26
Pengujian aktivitas antioksidan ekstrak etil asetat berbagai bagian tanaman kesambi (Gambar  1)  menunjukkan  sampel  akar, kulit  batang  dan  daun  memiliki  aktivitas antioksidan  dengan  kategori  sangat  kuat dengan  IC50  masing-masing  43,42;  14,36 dan  5,49  µg/mL,  sedangkan  sampel  daging dan kulit buah memiliki aktivitas antioksidan kategori  lemah  dengan  IC50  masing-masing 167,29  dan  159,88  µg/mL.  Pada  pengujian secara  kuantitatif  suatu  senyawa  dikatakan memiliki daya antioksidan yang sangat kuat jika  nilai  IC50  kurang  dari  50  ppm,  kuat (50–100  ppm),  sedang  (100–150  ppm),  dan lemah  (150–200  ppm). 26 Hasil  bioaktivitas sebagai  antioksidan  dari  masing-masing ekstrak  menunjukkan  bahwa  ekstrak  etil asetat pada bagian akar, kulit batang dan daun dari tanaman kesambi memberikan aktivitas terbaik  dibandingkan  dengan  ekstrak  etil asetat kulit dan daging buah. Analisis statistic one way ANOVA  menunjukkan  bahwa adanya  perbedaan  secara  signifikan  diantara sampel.  Adanya  aktivitas  yang  sangat  kuat pada  ekstrak  etil  asetat  daun  didukung  oleh kandungan  senyawa  flavonoid  dengan
kadar tinggi (40,7±0,77 mgEq/g) yang telah dilaporkan  pada  penelitian  sebelumnya. 27 Kandungan  senyawa  fenolik-flavonoid  dari ekstrak kesambi dapat menghambat aktivitas dari  radikal  dengan  mekanisme  transfer elektron maupun hidrogen yang berasal dari senyawa pada ekstrak etil asetat kesambi. 28,29 Daya  antioksidan  sampel  akar,  batang  dan daun  memiliki  aktivitas  aktioksidan  yang termasuk  kategori  sangat  kuat  namun  nilai IC50  masih  lebih  besar  jika  dibandingkan dengan  vitamin  C  dengan  IC50  3,25  µg/mL (Tukey HSD p<0,05, n=3). Senyawa  yang  diduga  sebagai antioksidan dari ekstrak berdasarkan hasil uji skrining  fitokimia  yaitu  senyawa  polifenol antara  lain  golongan  flavonoid,  fenolik  dan tanin.  Polifenol  secara  alami  terdapat  pada tanaman  dan  memiliki  potensi  antioksidan yang  dapat  menghambat  radikal  bebas. 30 Potensi  antioksidan  senyawa  polifenol tergantung  pada  jumlah  dan  susunan  gugus hidroksilnya  yang  dapat  menyumbangkan atom  hidrogen  ke  radikal  lipid  dan menghasilkan  turunan  lipid  dan  radikal antioksidan  yang  lebih  stabil. 31 Senyawa antioksidan  dari  ekstrak  etil  asetat  memiliki potensi dalam mencegah maupun mengobati berbagai  penyakit  termasuk  penyakit
Gambar 1. Grafik nilai IC50 Masing-masing sampel.
*Analisis statistik menunjukkan adanya perbedaan signifikan diantara sampel (p<0,05 Tukey HSD, n=3) terhadap aktivitasnya sebagai antioksidan.
degenerative  yang  secara  molekuler  dapat dipengaruhi oleh peningkatan reaksi oksidatif spesies (ROS).
7.  Kesimpulan Ekstrak  etil  asetat  berbagai  bagian tanaman  kesambi  memiliki  aktivitas antioksidan.  Bagian  daun  kesambi  memiliki aktivitas antioksidan paling baik dibandingkan dengan bagian kulit batang, akar, kulit buah, daging buah dengan nilai IC50 berturut-turut 5,4952;  14,3621;  43,4159;  159,8782  dan 167,2912 µg/mL.
Ucapan Terimakasih Penulis  mengucapkan  terima  kasih kepada  Sekolah  Tinggi  Ilmu  Farmasi Makassar  atas  dukungannya  dalam  proses pelaksanaan  penelitian  dan  Kementrian Pendidikan, Kebudayaan, Riset dan Teknologi atas  support  dana  dalam  penelitian  dalam hibah  Penelitian  Kerjasama  Dalam  Negeri tahun 2023.
Referensi 1.  Mbaoji  FN,  Ezike  AC,  Nworu  CS, Onyeto  CA,  Nwabunike  IA,  Okoli  IC, et  al.  Antioxidant  and  hepatoprotective potentials  of  Stemonocoleus  micranthus harms (Fabaceae) stem bark extract. Int J Pharm Pharm Sci. 2016;8(7).
2.  Nursamsiar, Khairuddin, Jumarni, Marwati  N.  Pengaruh  Jenis  Cairan Penyari  terhadap  Aktivitas  Antioksidan Daun  Kembang  Bulan  (Tithonia diversifolia  (Hemsi.)  A.Grey)  dengan Metode  ABTS.  Pharm  J  Farm  Indones. 2021 Dec;18(02):316–23.
3.  Rahayu  S,  Kurniasih  N,  Amalia  V. Ekstraksi  Dan  Identifikasi  Senyawa Flavonoid  Dari  Limbah  Kulit  Bawang Merah  Sebagai  Antioksidan  Alami.  al- Kimiya. 2015;2(1).
4.  Azizah  S,  Nursamsiar,  Nur  S.  Uji Aktivitas  Antioksidan  Ekstrak  Etanol Daun  Kedondong  Hutan  (Spondias pinnata  (L.F.)  Kurz.)  dengan  Berbagai Metode Uji. J Akad Kim. 2019;5(1):91–6.
5.  Situmeang  B,  Ilham  I,  Ibrahim  AM, Amin F, Mahardika M, Bialangi N, et al.
Aktivitas  Antioksidan  Dan  Antibakteri Dari Fraksi Ekstrak Metanol Kulit Batang Kesambi  (Shleichera  Oleosa).  J  Kim. 2022;16(1):53.
6.  Takaeb  MJ,  Nautani  M.  Potensi  Kulit Batang  Kesambi  (Schleichera  oleosa) Sebagai  Pengawet  Ikan  Tongkol (Euthynnus affinis). J Sains dan Edukasi Sains. 2021;4(1).
7.  Ghosh  P,  Chakraborty  P,  Mandal  A, Rasul  MG,  Chakraborty  M,  Saha  A. Triterpenoids from Schleichera oleosa of darjeeling foothills and their antimicrobial activity. Indian J Pharm Sci. 2011;73(2).
8.  Hanifah L, Kiptiyah K. Potensi kesambi (Scheichera  oleosa)  sebagai  kandidat imunomodulator.  Pros  Semin  Nas  Biol. 2020;(September).
9.  Balayar  R,  Kunwar  RM,  Bussmann RW.  Schleichera  oleosa  (Lour.)  Oken. Sapindaceae. In 2021.
10. Silitonga AS, Masjuki HH, Mahlia TMI, Ong  HC,  Kusumo  F, Aditiya  HB,  et  al. Schleichera oleosa L oil as feedstock for biodiesel production. Fuel. 2015;156.
11. Khandekar  U,  Bobade  A,  Ghongade R.  Evaluation  Of  Antioxident  Activity ,  In  -  Vitro  Antimicrobial  Activity  And Phytoconstituents Of Schleichera Oleosa ( Lour . ) Oken. Int J Biol Pharm Res  Int J Biol Pharm Res J. 2015;6(2).
12. Nursamsiar. Penentuan Kadar Flavonoid Dari Ekstrak Etanol Dan Etil Asetat Daun Kesambi  (Schleichera  oleosa.  L).  Acta Pharm Indones. 2021;46(2):33–7.
13. Thind TS, Singh R, Kaur R, Rampal G, Arora  S.  In  vitro  antiradical  properties and  total  phenolic  contents  in  methanol extract/fractions from bark of Schleichera oleosa  (Lour.)  Oken.  Med  Chem  Res. 2011;20(2).
14. Srinivas K, Celestin Baboo R V. GC-MS study of Schleichera oleosa (Lour.) Oken. Int J Curr Pharm Rev Res. 2011;2(2).
15. Rahayu  T,  Pratiwi  RIA,  Mubarakati NJ.  Profil  Metabolit  Daun  Kesambi (Schleichera oleosa) Berdasarkan Analisis Histokimia dan In Silico. Metamorf J Biol Sci. 2021;8(1).
16. Susilawati N, Ramona Y, Parwata I.
Pengaruh Konsentrasi Ekstrak Kasar Kulit Batang  Kusambi  (Schleichera  Oleosa (Lour)  Oken)  Terhadap  Pertumbuhan  In Vitro  Bakteri  E.  Coli.  Metamorf  J  Biol Sci. 2016;3(2).
17. Sari  P.  The  Antioxcidant,  Antibacterial Activity  and  Toxicity  of  Kesambi (Schleichera  Oleosa  (Lour)  Oken)  Brak Extracts. J Jamu Indones. 2020;4(3).
18. J.B  Harbone.  Metode  Fitokimia: Penuntun  Cara  Modern  Menganalisis Tumbuhan,  diterjemahkan  oleh  Kosasih Padmawinata  dan  Iwang  Soediro. Penerbit ITB, Bandung. 1996;2.
19. Jones  WP,  Kinghorn  AD.  Extraction  of plant  secondary  metabolites.  Methods Mol Biol. 2012;864.
20. Nur S, Sami FJ, Marwati M, Nursamsiar N, Fadri A, Khairuddin K. Phenolic and Flavonoid  Content  of  Black  Mulberry (Morus  nigra  L.)  Stem  and  Their Evaluation  Antioxidant  and  Cytotoxic Profile. Borneo J Pharm. 2022;5(4).
21. Fahmi  N,  Herdiana  I,  Rubiyanti  R. Pengaruh Metode Pengeringan Terhadap Mutu  Simplisia  Daun  Pulutan  (Urena lobata L.). Media Inf. 2020;15(2).
22. Holil  K,  Griana  TP.  Analisis  Fitokimia dan Aktivitas Antioksidan Ekstrak Daun Kesambi (Schleira oleosa) Metode DPPH. J Islam Pharm. 2020;5(1).
23. Marwati  M,  Taebe  B,  Tandilolo A,  Nur S.  Pengaruh  Tempat  Tumbuh  dan  Profil Kandungan  Kimia  Minyak  Atsiri  dari Rimpang Jahe Merah (Zingiber officinalle Linn. Var rubrum). J Sains dan Kesehat. 2021;3(2):248–54.
24. Nur  S,  Baitanu  JA,  Gani  SA.  Pengaruh Tempat Tumbuh dan Lama Penyulingan secara Hidrodestilasi terhadap Rendemen dan  Profil  Kandungan  Kimia  Minyak Atsiri  Daun  Kemangi  (Ocimum  canum Sims L.). J Fitofarmaka Indones. 2019;
25. Thaipong  K,  Boonprakob  U,  Crosby  K, Cisneros-Zevallos L, Hawkins Byrne D. Comparison of ABTS, DPPH, FRAP, and ORAC assays for estimating antioxidant activity from guava fruit extracts. J Food Compos Anal. 2006;19(6–7).
26. Molyneux  P.  The  Use  of  the  Stable
Free  Radical  Diphenylpicryl-hydrazyl (DPPH)  for  Estimating  Antioxidant Activity.  Songklanakarin  J  Sci  Technol. 2004;26(December 2003).
27. Nur  S,  Nursamsiar  N,  Khairuddin  K, Megawati M, Fadri A. Penentuan Kadar Flavonoid  Dari  Ekstrak  Etanol  Dan  Etil Asetat Daun Kesambi (Schleichera oleosa. L). Acta Pharm Indones. 2021;46(2):33– 7.
28. Nur  S,  Aswad  M,  Yulianty  R,  Burhan A,  Patabang WJD,  Fadri A,  et  al.  Profil Aktivitas Antioksidan dari Ekstrak Buah Kersen  (Muntingia  calabura  L.)  dengan Metode  TAC  dan  CUPRAC.  JPSCR  J Pharm Sci Clin Res. 2022;
29. Nur  S, Aswad  M,  Yulianti  R,  Sami  FJ, Burhan  A,  Fadri  A,  et  al.  Antioxidant activity  profile  of  extract  and  fraction of  kersen  (  Muntingia  calabura  L.) fruits  prepared  by  different  methods. In:  IOP  Conference  Series:  Earth  and Environmental Science. 2022.
30. Shalaby EA, Shanab SMM. Comparison of  DPPH  and  ABTS  assays  for determining  antioxidant  potential  of water and methanol extracts of Spirulina platensis. Indian J Mar Sci. 2013;42(5).
31. Shahidi F, Ambigaipalan P. Phenolics and polyphenolics  in  foods,  beverages  and spices:  Antioxidant  activity  and  health effects  -  A  review.  Vol.  18,  Journal  of Functional Foods. 2015.