实验动物血液采集方法【实验代做】
在各种实验研究中,常常需要采集实验动物的血液,以供进行常规检验或生化及化学分析之用,故必须掌握正确的采血技术。
(一)实验动物血液采集方法实验动物的采血方法很多,按采血部位不同,可分为:尾部采血(割、剪鼠尾),鼠尾刺血法,眼眶静脉丛采血,断头采血,心脏采血,颈静脉(动脉)采血,腹主动脉采血,股动(静)脉采血,耳缘剪口采血,耳静脉采血,后肢外侧小隐静脉采血,前肢内侧皮下头静脉采血,毛细血管采血,翼下采血等。
采血时要注意采血场所有充足的光线:室温夏季最好保持在25~28℃,冬季20~25℃为宜,采血用具和采血部位一般需进行消毒;若需抗凝血,应在注射器或试管内预先加入抗凝剂;所需采血量应控制在动物的最大安全采血量范围内。由于采血量的不同,因而采血的部位也不同。
实验动物采血时应注意不宜一次采血量过多或采血过于频繁,否则因采血可影响动物健康,造成贫血,甚至死亡。动物多次重复采血时,采血时间应相对固定。
在采血时应注意:有些项目检查需要空腹或禁食一定时间后采血,如肝功能、血糖、血脂等。另也应注意多次采血测结果时采血后测定时间、室温、试剂盒批号(或用主要试剂)等应尽可能一致。
(二)常用实验动物采血部位
1.大鼠和小鼠采血方法
(1)割尾采血:需血量较少时采用此法采血。先将动物固定或麻醉,并露出鼠尾,将鼠尾浸在45℃左右温水中数分钟或将鼠尾放在电取暖前烤数分钟或用酒精涂擦鼠尾,使鼠尾血管充盈,然后将鼠尾擦干,用锐器(刀或剪刀)割去尾尖1~2mm(小鼠)或3~5mm(大鼠),让血液自由顺管壁流入试管或用血红蛋白吸管吸取,为采取较多的血,用手自尾根部向尾尖按摩。采血结束时,伤口消毒,并压迫止血,也可用火烧灼(电器烧灼)止血或6%火棉胶涂敷止血。也可在尾部做一横切口,割破尾动脉或静脉,收集血液及止血方法同上。此法采血每鼠一般可采血10余次,小鼠每次可采血0.1ml左右,大鼠可采血0.3~0.5ml,如方法合适,室温较高,小鼠也可采血0.5ml以上,大鼠可采血3ml以上。
(2)鼠尾刺血法:大鼠采血量很少时(用于做白细胞计数、血红蛋白检查或血糖测试),可采用本法。先将鼠尾用温水擦拭,再用酒精消毒和擦拭,使鼠尾充血,用7号或8号注射针头,刺入鼠尾静脉,拔出针头时即有血滴出,如长期反复采血,应先靠近鼠