Silviase/jgov_v1.4_full_ann huggingface dataset:
6.6 必要時以外は手術室の扉を閉めておく。(IIIA)

6.7 整形外科的な人工物の植え込み術を行う場合は、HEPAフィルターを介した空気を供給できる手術室で行う方が良い $ ^{18} $ 。(IIA)

6.8 手術室に入るスタッフは最小限に制限する。(IIIA)

## 7 手術時の服装と覆布

7.1 手術中の手術室もしくは滅菌器械が展開されている部屋に入室する全ての医療従事者は、口と鼻を完全に覆うサージカルマスクと頭髪を完全に覆う帽子を着用する。(IIIA)

7.2 手術用ガウンや覆布は撥水性のものを使用する。(IIIA)

## 8 ドレーン

8.1 ドレーンは手術創とは異なる切開部位から、個別に留置する。(IIIA)

8.2 ドレーンは早期に抜去する $ ^{19} $ 。(IIIA)

8.3 閉鎖式のドレーンを使用しても良い $ ^{20} $ 。(IIC)

## 9 手術創管理

9.1 一次閉鎖された手術創はガーゼで被覆するよりも、適切な保温、湿潤環境が維持できるフィルムドレッシング材を用いる $ ^{21} $ 。(IIIA)

9.2 ドレッシング材の交換を行う場合や手術部位に接触する場合には、処置の前後に手指消毒を行い清潔な（未滅菌で良い）手袋を使用する。(IIIA)

9.3 閉鎖されていない切開創のドレッシング材を交換する場合には、無菌操作で行う。(IIIA)

## 10 サーベイランス

10.1 全国的なサーベイランスに参加して手術部位感染の発生率の施設間比較を行うことにより、自施設における手術部位感染対策の有効性を客観的に評価する方が良い $ ^{22} $ 。(IIIB)

## 文献

$ ^{1} $ Edwards LD. The epidemiology of 2056 remote site infections and 1966 surgical wound infections occurring in 1865 patients: a four year study of 40,923 operations at Rush-Presbyterian-St. Luke's Hospital, Chicago. Ann Surg 1976; 184:758-66.

$ ^{2} $ Simchen E, Rozin R, Wax Y. The Israeli Study of Surgical Infection of drains and the risk of wound infection in operations for hernia. Surg Gynecol Obstet 1990; 170: 331-7.

$ ^{3} $ Zerr KJ, Furnary AP, Grunkemeier GL, Bookin S, Kanhere V, Starr A. Glucose control lowers the risk of wound infection in diabetics after open heart operations. Ann Thorac Surg 1997; 63: 356-61.

$ ^{4} $ Furnary AP, Zerr KJ, Grunkemeier GL, Starr A. Continuous intravenous insulin infusion reduces the incidence of deep sternal wound infection in diabetic patients after cardiac surgical procedures. Ann Thorac Surg. 1999; 67: 352-60.

$ ^{5} $ Trick WE, Scheckler WE, Tokars JI, Jones KC, Reppen ML, Smith EM, Jarvis WR. Modifiable risk factors associated with deep sternal site infection after coronary artery bypass grafting. J Thorac Cardiovasc Surg. 2000; 119: 108-14.

$ ^{6} $ Nagachinta T, Stephens M, Reitz B, Polk BF. Risk factors for surgical wound infection following cardiac surgery. J Infect Dis 1987; 156: 967-73.

$ ^{7} $ Beitsch P, Balch C. Operative morbidity and risk factor assessment in melanoma patients undergoing inguinal lymph node dissection. Am J Surg 1992; 164: 462-6.

$ ^{8} $ Mishriki SF, Law DJ, Jeffery PJ. Factors affecting the incidence of postoperative wound infection. J Hosp Infect 1990; 16:223-30.
$ ^{9} $ Winston KR. Hair and neurosurgery. Neurosurgery. 1992; 31: 320-9.

$ ^{10} $ Niel-Weise BS, Wille JC, van den Broek PJ. Hair removal policies in clean surgery: systematic review of randomized, controlled trials. Infect Control Hosp Epidemiol. 2005; 26: 923-8.

$ ^{11} $ Tanner J, Woodings D, Moncaster K. Preoperative hair removal to reduce surgical site infection. Cochrane Database Syst Rev. 2006 Jul 19; 3: CD004122.

$ ^{12} $ Webster J, Osborne S. Preoperative bathing or showering with skin antiseptics to prevent surgical site infection. Cochrane Database Syst Rev. 2006 Apr 19; 2: CD004985.

$ ^{13} $ Hobson DW, Woller W, Anderson L, Guthery E. Development and evaluation of a new alcohol-based surgical hand scrub formulation with persistent antimicrobial characteristics and brushless application. Am J Infect Control 1998; 26: 507-12.

$ ^{14} $ Mulberry G, Snyder AT, Heilman J, Pyrek J, Stahl J. Evaluation of a waterless, scrubless chlorhexidine gluconate/ethanol surgical scrub for antimicrobial efficacy. Am J Infect Control 2001; 29: 377-82.

$ ^{15} $ Bolyard EA, Tablan OC, Williams WW, Pearson ML, Shapiro CN, Deitchman SD, et al. Guideline for infection control in healthcare personnel, 1998. Hospital Infection Control Practices Advisory Committee. Am J Infect Control 1998; 26:289-354.

16 日本医療福祉設備協会．日本医療福祉設備協会規格「病院空調設備の設計・管理指針」．2004.

$ ^{17} $ American Institute of Architects. Guidelines for design and construction of hospital and health care facilities. Washington (DC): American Institute of Architects Press; 1996.

$ ^{18} $ Lidwell OM, Elson RA, Lowbury EJ, Whyte W, Blowers R, Stanley SJ, et al. Ultraclean air and antibiotics for prevention of postoperative infection. A multicenter study of 8,052 joint replacement operations. Acta Orthop Scand 1987; 58: 4-13.

$ ^{19} $ Drinkwater CJ, Neil MJ. Optimal timing of wound drain removal following total joint arthroplasty. J Arthroplasty 1995; 10: 185-9.

$ ^{20} $ Parker MJ, Roberts CP, Hay D. Closed Suction Drainage for Hip and Knee Arthroplasty. AMeta-Analysis. J Bone Joint Surg Am 2004; 86: 1146-52.

$ ^{21} $ Linsky CB et al: The effect of dressing on wound inflammation and scar tissue. In Dineen P. and Hidrick-Smith D. eds., The Surgical Wound. Lea & Febiger, Philadelphia. pp191-205, 1981

$ ^{22} $ Haley RW, Culver DH, White JW, Morgan WM, Emori TG, Munn VP. The efficacy of infection surveillance and control programs in preventing nosocomial infections in US hospitals. Am J Epidemiol 1985; 121: 182-205.
## カテーテル関連血流感染対策

## 1 中心静脈カテーテルの衛生管理

1.1 中心靜脈栄養法（total parenteral nutrition: TPN）の適応 $ ^{1-7} $

1.1.1 栄養療法が必要な場合は可能な限り経腸栄養を用いる。(IIA)

1.1.2 静脈栄養は経腸栄養または経口摂取が不可能または不十分な場合に用いる。(IIIA)

1.1.3 中心静脈栄養法は静脈栄養の長期化が予測される場合に用いる。(IIIA)

### 1.2 中心静脈カテーテル選択の基準

1.2.1 必要最小限の内腔数のカテーテルを選択する $ ^{8-10} $ 。（IA）

1.2.2 長期使用が予想される患者では、長期留置用のカテーテルを選択する $ ^{11,12} $ 。(IIA)

### 1.3 カテーテル挿入部位

1.3.1 感染防止のためにはカテーテル挿入は鎖骨下静脈穿刺を第一選択とする $ ^{13} $ 。(IIA)

### 1.4 皮下トンネルの作成

1.4.1 短期間の留置では、皮下トンネルを作成する必要はない $ ^{14,15} $ 。（IA）

### 1.5 定期的に入れ換え

1.5.1 定期的にカテーテルを入れ換える必要はない $ ^{16} $ 。(IIA)

1.6 高度バリアプレコーション

1.6.1 中心静脈カテーテル挿入時は高度バリアプレコーション（清潔手袋、長い袖の滅菌ガウン、マスク、帽子と大きな清潔覆布）を行う $ ^{17} $ 。(IA)

### 1.7 抗菌薬の予防投与

1.7.1 中心静脈カテーテル挿入に伴う抗菌薬の予防投与は行わない $ ^{18} $ 。(IIA)

1.8 カテーテル挿入時の皮膚の消毒薬

1.8.1 カテーテル挿入時の消毒は、0.5%クロルへキシジンアルコールまたは10%ポビドンヨードを用いる $ ^{19} $ 。(IA)

1.9 カテーテル留置期間中の皮膚の消毒薬

1.9.1 カテーテル挿入部皮膚の処置で用いる消毒薬は、以下の3つから選択する。0.5%クロルヘキシジンアルコール、10%ポビドンヨード $ ^{20,21} $ 。(IIA)

### 1.10 挿入部位の剃毛

1.10.1 穿刺に先立って局所の剃毛はしない。除毛が必要であれば、医療用電気クリッパーなどを用いる $ ^{22} $ 。(IA)

1.11 カテーテル挿入部の抗菌薬含有軟膏やポビドンヨードゲルの塗布

1.11.1 抗菌薬含有軟膏を使用しない $ ^{23} $ 。(IIA)

1.11.2 ポビドンヨードゲルを使用しない $ ^{24} $ 。(IIA)

### 1.12 カテーテル挿入部の観察

1.12.1 カテーテル挿入部の発赤、圧痛、汚染、ドレッシングの剥がれなどを毎日観察する方が良い。(IIIB)

### 1.13 ドレッシング

1.13.1 滅菌されたガーゼ型ドレッシングまたはフィルム型ドレッシングを使用する $ ^{25,26} $ 。(IA)
### 1.14 ドレッシング交換の頻度

1.14.1 ドレッシング交換は週1～2回、曜日を決めて定期的に行う $ ^{27} $ 。(IIIA)

### 1.15 一体型輪液ラインの使用

1.15.1 一体型輸液ラインを用いる方が良い $ ^{28} $ 。（IIIB）

### 1.16 ニードルレスシステム

1.16.1 二ードルレスシステムの感染防止効果は明らかでないことを理解して使用を決める $ ^{29} $ 。

(IIA)

### 1.17 三方活栓

1.17.1 三方活栓は手術室や ICU 以外では、輪液ラインに組み込まない $ ^{30-32} $ 。(IIA)

1.17.2 三方活栓から側注する場合の活栓口の消毒には、消毒用エタノールを使用する。(IIA)

### 1.18 輸液ラインの管理

1.18.1 輸液ラインとカテーテルの接続部の消毒には消毒用エタノールを用いる $ ^{33} $ 。(IIA)

1.18.2 輸液ラインは曜日を決めて週 1～2 回定期的に交換する $ ^{34} $ 。(IIB)

### 1.19 脂肪乳剤の投与に使用する輪液ラインの交換頻度

1.19.1 脂肪乳剤の投与に使用する輸液ラインは、24時間以内に交換する $ ^{35} $ 。(IIIA)

### 1.20 インラインフィルター

1.20.1 インラインフィルターを使用する $ ^{36} $ 。(IIIA)

### 1.21 カテーテルロック

1.21.1 作り置きしたヘパリン生理食塩水によるカテーテルロックは行わない $ ^{37} $ 。(IVA)

### 1.22 輸液・薬剤とその調製法

#### 1.22.1 高力ロリー輪液製剤の調製に関する基本的考え方

1.22.1.1 高カロリー輸液製剤への薬剤の混合は、可能な限り薬剤師の管理下に無菌環境下で行う。(IIIA)

1.22.1.2 高カロリー輸液を投与するにあたっては、薬剤の数量および回路の接続数を最少化する。(IIIA)

#### 1.22.2 病棟での薬剤調製

1.22.2.1 薬剤師は薬液混合法、調製場所の選択・清潔管理に関して指導・助言する。(IIIA)

1.22.2.2 病棟での混合薬剤数は可能な限り少なくする。(IIIA)

1.22.2.3 混合場所は専用スペースで行う。(IIIA)

1.22.2.4 無菌設備を設置する方が良い。(IIIB)

1.22.2.5 作業面の消毒は消毒用アルコールを使用する方が良い。(IIIB)

1.22.2.6 紫外線殺菌灯や空気清浄機は使わない方が良い。(IIIB)

1.22.2.7 薬剤の混合にあたっては、その作業に専念できるように係を決める方が良い。

(IIIB)

1.22.2.8 混合操作時は専用ガウンを着用し、手洗いの後に清潔な手袋（未滅菌で良い）を着用して作業を行う方が良い。(IIIB)

### 1.23 高カロリー輪液基本薬・輪液剤の選択および使用

#### 1.23.1 基本原则
1.23.1.1 糖電解質液とアミノ酸製剤を混合する場合は、高カロリー輸液用キット製剤を使用する方が良い（IIIB）

1.23.1.2 スリーインワンバッグ製剤（アミノ酸、糖質、脂肪が一つのバッグに入っているもの）では細菌が混入すると急速に増殖する。また、フィルターが使用できないため、微量元素製剤と高カロリー輪液用総合ビタミン剤以外は混注しない。(IIIA)

1.23.1.3 スリーインワンバッグ製剤では完全閉鎖ルートとし、その製剤の輪液ルートからの側注は禁止する。(IIIA)

1.23.1.4 脂肪乳剤を含んだ製剤は、三方活栓にひび割れを生じさせることがあるので、接続部での液漏れや汚染を監視する。(IIA)

#### 1.23.2 高力ロリー輪液基本液への薬剤の添加

1.23.2.1 高カロリー輪液にアルブミン製剤を加えない $ ^{38} $ 。(IIA)

1.23.2.2 高力ロリー輪液に脂肪乳剤を加えない $ ^{39} $ 。(IIIB)

#### 1.23.3 調製後の保存方法

1.23.3.1 高カロリー輸液製剤は、混合後 28 時間以内に投与が完了するように計画する。

(IIIA)

1.23.3.2 高カロリー輸液製剤を保存する必要がある場合には無菌環境下で調製し、冷蔵庫保存をする。(IIIA)

### 1.24 カテーテル関連血流感染（CR-BSI）

1.24.1 CR-BSI が疑われる場合の対処

1.24.1.1 CR-BSI が疑われる場合は血液培養を行う（IIIA）

1.24.1.2 他に感染源が考えられない場合にはカテーテルを抜去する。(IIIA)

1.24.1.3 カテーテル抜去時には、血液培養とともにカテーテルの先端培養を行う。

(IIIA)

1.24.1.4 真菌が原因である場合には、真菌性眼内炎に留意して眼科的診察を行う $ ^{40} $ 。

(IIIA)

#### 1.24.2 ガイドワイヤーでの入れ換え

1.25.2.1 感染源が不明で、カテーテル敗血症を除外するためには、ガイドワイヤーを用いて入れ換える方が良い $ ^{41} $ 。(IIB)

### 1.25 システムとしてのカテーテル管理

1.25.1 中心静脈カテーテルのチームによる管理

1.25.1.1 専門チームによるカテーテル管理を行う方が良い $ ^{42,43} $ 。（IIB）

1.25.1.2 ICU では看護師 - 患者比を適正に保つ方が良い $ ^{44} $ 。(IIB)

## 2 末梢静脈カテーテルの衛生管理

### 2.1 留置部位

2.1.1 上肢の静脈を使用する方が良い $ ^{45} $ 。(IIIB)

### 2.2 カテーテルの選択

2.2.1 カテーテルは、静脈炎予防のためには、可能な限り細径のものを使用する方が良い $ ^{46} $ 。
## (IIIB)

### 2.3 末梢静脈カテーテルの留置期間

2.3.1 静脈炎のリスクを減らすため、末梢静脈カテーテルは96時間以上留置しない方が良い $ ^{47} $ 。(IIIB)

### 2.4 交换頻度

2.4.1 末梢静脈カテーテルの輪液ラインは、カテーテル入れ替え時に交換する方が良い。(IIIB)

### 2.5 カテーテルロック

2.5.1 カテーテルロックを実施する場合は、作り置きしたヘパリン生理食塩水は使用しない。(IIIA)

### 2.6 静脈炎発生時の対応

2.6.1 静脈炎の徴候（発赤、腫脹、疼痛）がある場合は、カテーテルを抜去する $ ^{48} $ 。(IIIA)

### 2.7 静脈炎予防薬の使用

2.7.1 静脈炎予防のためのステロイド剤、ヘパリン、血管拡張剤は、使用しない方が良い $ ^{49} $ 。(IIB)

### 2.8 刺入部のドレッシング管理法

2.8.1 カテーテル刺入部は滅菌のドレッシングで被覆し、カテーテル入れ換え時に交換する方が良い $ ^{50} $ 。(IIIB)

#### 2.8.2 末梢のアミノ酸製剤

2.8.2.1 アミノ酸加糖電解質製剤を投与する場合は側注を避けるなどの厳密な衛生管理下においてのみ使用する。(IIIA)

## 文献

$ ^{1} $ Gallagher-Allred CR, Voss AC, Finn SC, et al: Malnutrition and clinical outcomes: the case for medical nutritional therapy. J Am Diet Assoc 1996; 96: 361-366

$ ^{2} $ Reilly JJ Jr, Hull SF, Albert N, et al: Economic impact of malnutrition: a model system for hospitalized patients. JPEN 12:371-376, 1988

$ ^{3} $ Moore EE, Jones TN: Benefits of immediate jejunostomy feeding after major abdominal trauma—a prospective, randomized study. J Trauma 1986; 26: 784-881

$ ^{4} $ Lipman TO: Bacterial translocation and enteral nutrition in humans: an outsider looks in. JPEN 1995; 19: 156-165

$ ^{5} $ Reynolds JV, Kanwar S, Welsh FK, et al: Does the route of feeding modify gut barrier function and clinical outcome in patients after major upper gastrointestinal surgery? JPEN 1997; 21: 196-201

$ ^{6} $ Braunschweig CL, Levy P, Sheean PM, et al: Enteral compared with parenteral nutrition: a meta-analysis. Am J Clin Nutr 2001; 74: 534-542

$ ^{7} $ The Veteran Affairs Total Parenteral Nutrition Cooperative Study Group. Perioperative total parenteral nutrition in surgical patients. N Engl J Med 1991; 325: 525-532

$ ^{8} $ Zurcher M, Tramer MR, Walder B: Colonization and bloodstream infection with single- versus multi-lumen central venous catheters: a quantitative systematic review. Anesth Analg 2004; 99: 177-182

$ ^{9} $ Clark-Christoff N, Watters VA, Sparks W et al: Use of triple-lumen subclavian catheters for administration of total parenteral nutrition. JPEN 1992; 16: 403-407

$ ^{10} $ Dezfulian C, Lavelle J, Nallamothu BK, et al: Rates of infection for single-lumen versus multilumen central venous catheters: a meta-analysis. Crit Care Med 2003; 31: 2385-2390

$ ^{11} $ Shapiro ED, Wald ER, Nelson KA et al: Broviac catheter-related bacteremia in oncology patients. Am J Dis Child 1982; 136: 679-681

$ ^{12} $ Harter C, Ostendorf T, Bach A, et al: Peripherally inserted central venous catheters for autologous blood progenitor cell plantation in patients with haematological malignancies. Support Care Cancer 2003; 11: 790-794

13 Mermel LA, McCormick RD, Springman SR et al: The pathogenesis and epidemiology of catheter-related infection with
Crit Care Med 1997; 25: 1417-1424

$ ^{42} $ Gianino MS, Brunt LM, Eisenberg PG: The impact of nutritional support team on the cost and management of multilumen central venous catheters. J Intraven Nurs 1992; 15: 327-332

$ ^{43} $ Faubin WC, Wesley JR, Khaldi N et al: Total parenteral nutrition catheter sepsis: impact of the team approach. JPEN 1986;10:642-645

$ ^{44} $ Dorsey G, Borneo HT, Sun SJ et al: A heterogeneous outbreak of Enterobacter cloacae and Serratia marcescens infections in a surgical intensive care unit. Infect Control Hosp Epidemiol 2000; 21: 465-469

$ ^{45} $ 井上善文、徳永秋子、森澤美穂、他：末梢靜脈輸液路における靜脈炎発生に影響する因子についての検討．外科治療2000; 82: 627-634

$ ^{46} $ Tayssen P: Postinfusion phlebitis and the caliber of the catheter. Ugeskr Laeg 1973; 135: 1238-1241

$ ^{47} $ Grune F, Schrappe M, Basten J, et al: Phlebitis rate and time kinetics of short peripheral intravenous catheters. Infection 2004; 32: 30-32

$ ^{48} $ Tagalakis V, Kahn SR, Libman M, et al: The epidemiology of peripheral vein infusion thrombophlebitis: a critical review. Am J Med 2002; 113: 146-151

$ ^{49} $ Tighe MJ, Wong C, Pharm B et al: Do heparin, hydrocortisone, and glyceryl trinitrate influence thrombophlebitis during full intravenous nutrition via a peripheral vein? JPEN 1995; 19: 507-509

$ ^{50} $ Hoffmann KK, Western SA, Kaiser DL, et al: Bacterial colonization and phlebitis-associated risk with transparent polyurethane film for peripheral intravenous site dressings. Am J Infect Control 1988; 16: 101-106
## 経腸栄養法に関する感染対策

### 1. 経腸栄養チューブ留置に関連した感染対策

1.1 経鼻チューブ留置時の副鼻腔炎や中耳炎の予防

1.1.1 5～12F の口径の経腸栄養専用チューブを用いる方が良い $ ^{1-3} $ 。(IIIB)

1.1.2 長期留置の場合は胃癥や腸癭へ変更する方が良い。(IIIC)

1.2 経鼻チューブ挿入時の気管内誤挿入の予防

1.2.1 経腸栄養用経鼻チューブ挿入後には先端位置を X 線撮影で確認する 4-8。（IIIA）

1.3 胃痿造設に関連した痿孔部感染の予防

1.3.1 咽頭部の細菌を胃癩造設部に定着させない工夫やストッパーによる胃壁に対する過度の圧迫を避ける工夫をする方が良い $ ^{9} $ 。(IIIB)

1.3.2 胃癭周囲の状態を毎日観察し、清潔な状態を保つ方が良い $ ^{10} $ 。(IIIB)

### 2. 细菌性肠炎予防对策

### 2.1 経腸栄養剤調製時の注意点

2.1.1 感染予防のためには、バッグ型：RTH（Ready-To-Hang）製剤を用いる方が良い $ ^{11-15} $ 。(IIB)

2.1.2 調製する必要がある経腸栄養剤は、投与直前に調製する方が良い $ ^{16} $ 。(IIB)

2.1.3 経腸栄養剤を調製後、投与までに時間がある場合は冷蔵庫内に保存する方が良い。(IIIB)

2.1.4 開封した後、冷蔵していない状態で8時間以上経過したものは廃棄する方が良い $ ^{17} $ 。

(IIIB)

### 2.2 経腸栄養剤投与時の注意点

2.2.1 溶解・希釈を行う製剤では8時間以内に、RTH製剤では24時間以内に投与を完了する $ ^{18-21} $ 。(IIA)

2.2.2 経腸栄養剤投与容器は使用のたびに洗浄・消毒（熱水もしくは次亜塩素酸ナトリウムを使用）し、経腸栄養剤の注ぎ足しをしない方が良い $ ^{22,23} $ 。(IIIB)

2.2.3 経腸栄養投与ラインは、使用するために洗浄・消毒（熱水もしくは次亜塩素酸ナトリウムを使用）を行う方が良い $ ^{24-28} $ 。（IIIB）

2.2.4 空腸癥から経腸栄養剤を投与する場合は、胃癥を介した場合よりも厳重な清潔操作を行う方が良い $ ^{29,30} $ 。(IIIB)

### 3. 誤噓性肺炎防止対策

3.1 胃癭からの経腸栄養で誤嚥性肺炎が発生する場合は、腸癭から投与する方が良い $ ^{31-45} $ 。(IIIB)

3.2 経腸栄養剤投与時には、誤噓性肺炎防止のために上半身を挙上する方が良い $ ^{46-49} $ 。（IIIB）

3.3 急速に胃内に経腸栄養剤を注入することにより胃食道逆流に伴う誤噎性肺炎を起こす危険があるので、徐々に投与速度を上げる方が良い $ ^{50-52} $ 。(IIIB)

3.4 経腸栄養剤の固形化・半固形化も考慮しても良い $ ^{53,54} $ 。(IIIC)
## 内視鏡関連感染対策

## 1 内視鏡室

1.1 施設で内視鏡検査を施行する部門を一力所に集約する方が良い（内視鏡センター）¹。（IIIB）

1.1.1 内視鏡の衛生管理と保守点検の責任者をおく。(IVA)

1.1.2 内視鏡の運用（洗浄・消毒、個人用防護具の使い方、内視鏡の保管、検査室の清掃など）に関する手順を標準化する。(IIIA)

1.2 施設に適合した内視鏡の運用方法をマニュアル化する (IVA)

1.2.1 使用するために製造業者の取扱説明書に従って、加圧／リーク・テストを実行する $ ^{1-4} $

(IA)

1.2.2 使用後の内視鏡はコンテナに入れ周囲に汚染のないように洗浄室まで搬送する。(IIIA)

1.3 内視鏡室は、医療従事者や患者の安全を考慮して設計し、換気設備により有害な消毒薬の曝露を最小限化する $ ^{1,4-9} $ 。(IA)

1.4 術者、介助者、洗浄する者が、個人用防護具をいつでも使用できるようにして、化学物質、血液、他の感染性物質に曝露されないようにする $ ^{10-12} $ 。(IIIA)

1.4.1 術者は、検査中に清潔な手袋（未減菌で良い）、ガウン、マスク、ゴーグル（またはフェースシールド）を着用する。

1.4.2 検査終了後、個人防護具をすべて外し、手指消毒を行う。

1.4.3 個人用防護具をしたままカルテなどの記載は行わない。

1.4.4 介助者は、必要に応じて個人用防護具を使用するが、患者ごとに個人用防護具を換える。

1.4.5 洗浄する者は、手袋、ガウン、マスク、ゴーグル（またはフェースシールド）を着用する。

1.4.6 洗浄終了後、個人用防護具をすべて外し、手指消毒を行う。

1.4.7 洗浄中であっても個人用防護具をしたまま検査室から出ない。

1.5 内視鏡室に勤務するすべての職員は、感染管理上の推奨事項（例えば標準予防策）について訓練を受け、それを厳守する $ ^{13} $ 。(IIIA)

1.5.1 内視鏡の衛生管理に関する院内研修会を開催する。(IVA)

1.5.2 独自に院内研修会を持ちにくい施設では、地域で連携して内視鏡の衛生管理に関する院外研修会に参加する。（少なくとも年1回以上）(IVA)

1.6 内視鏡が使用前のものか使用後のものか判別できるよう、医療機関で取り決めをしておく。(IIIA)

1.6.1 内視鏡の保管、検査室、洗浄室の順で動線を設定し、使用前の内視鏡と使用後の内視鏡が交差しないようにする。

1.6.2 使用後の内視鏡は直ちに専用の搬送用トレイに入れ、洗浄室に搬送する。

1.7 患者名、診療録番号、手技名、術者、内視鏡シリアルナンバー、洗浄者、内視鏡洗浄消毒装置についての検査記録簿を作成し記録する $ ^{1,5} $ 。(IVA)

## 2 内視鏡の一次洗浄

2.1 内視鏡の部品（送気・送水と吸引バルブなど）を取扱説明書に従って取り外し、完全に酵素
系洗剤に浸漬する $ ^{14,15} $ 。（IIIA）

2.2 酵素系洗剤は、温度管理が重要であり使用毎に廃棄する $ ^{2,4,15} $ 。（IIIA）

2.3 自動洗浄消毒器を使用する場合でも必ず一次洗浄を行う 1-5,16-26。(IIIA)

2.4 内視鏡のチャンネル、部品、コネクタは開口部の大きさに合ったブラシを用いて洗浄する $ ^{4,21,26} $ 。

(IIIA)

2.4.1 洗净用品は、ディスポーザブル製品にするか、使用ごとに洗浄後、消毒する $ ^{4,21,26} $ 。

(IIIA)

## 3 内視鏡の再処理（消毒／滅菌）

3.1 内視鏡は、使用ごとに高水準消毒を行うか滅菌する $ ^{1,2,4,5,13,16,19,21,26,27} $ 。(IIIA)

3.1.1 高水準消毒薬として、グルタラール、フタラール、過酢酸を使用する。(IIIA)

3.1.2 内視鏡に適合した消毒薬を取扱説明書に従って選択する $ ^{2,4,5,21,28-32} $ 。（IIIA）

3.2 再利用可能な生検鉗子は滅菌する 1-5, 13, 16, 19, 21, 33, 34。（IIIA）

3.3 浸漬法を行う場合、内視鏡や部品を高水準消毒薬に完全に浸漬する。高水準消毒薬が全てのチャンネルを満たしていることを確認する $ ^{1,3-5,19,21,28-30} $ 。(IB)

3.4 取扱説明書により内視鏡と自動洗浄消毒器の適合性について確認する $ ^{2,5,21,28-32} $ 。(IB)

3.5 用手法で消毒する場合、高水準消毒の後に、滅菌水、濾過水のいずれかで内視鏡のすすぎ、チャンネルを洗い流して、消毒薬を除去する $ ^{1-3,5,19,23,35-38} $ 。(IIIA)

3.5.1 内視鏡をすすいだ水は 1 回毎に排水する 1-3, 5, 19, 23, 35-38。

3.5.2 チャンネルに消毒用のエタノールまたは70%イソプロパノールを通した後、送気して乾燥させる $ ^{1-3,5,19,23,35-38} $ 。

3.6 高水準消毒薬については最小有効濃度を日常的に確認する 1,2,4,5,19,27,39。(IIIA)

3.6.1 使用開始前に消毒薬をチェックして結果を記録する。

3.6.2 化学的インジケータで有効濃度を下回っていた場合、その消毒薬は廃棄する 1,2,4,5,19,27,39。

3.6.3 自動洗浄消毒器に消毒薬をつぎ足す場合は、最初に入れた溶液を基準として期限を設定する（用手洗浄の場合も同様）。消毒薬を後からつぎ足しても、使用期限は延長しない $ ^{4,19,40} $ 。

3.7 送水ボトルとその連結チューブは、最低一日1回高水準消毒または滅菌を行う。送水ボトルには滅菌水を入れる $ ^{1,41-44} $ 。

## 4 内視鏡の保管

4.1 内視鏡は、汚染しないように保管する $ ^{1,4,19,21} $ 。（IIA）

4.1.1 洗浄、消毒した内視鏡は、専用の保管庫で保管する（ケースに保管しない）。

4.1.2 保管庫のドアは閉めておく。

4.2 内視鏡は、乾燥しやすいように垂直に立てて保管する（製造元の指示に従ってキャップ、弁、他の取り外し可能な器具は外しておく）¹,²,⁴,¹⁹,²¹,⁴⁵。(IIA)
32. Streulens MJ, Rost F, Deplano A, Maas A, Schwam V, Serruys E, et al. Pseudomonas aeruginosa and Enterobacteriaceae bacteremia after biliary endoscopy: an outbreak investigation using DNA macrorestriction analysis. Am J Med 1993; 95: 489-98.

33. Bronowicki J-P, Venard V, Botté C, Monhoven N, Gastin I, Choné L, et al. Patient-to-patient transmission of hepatitis C virus during colonoscopy. N Engl J Med 1997; 337: 237-40.

34. Graham DY, Osato MS. Disinfection of biopsy forceps and culture of Helicobacter pylori from gastric mucosal biopsies [letter]. Am J Gastroenterol 1999; 94: 1422-3.

35. Alvarado CJ, Stolz SM, Maki DG. Nosocomial infections from contaminated endoscopes: a flawed automated endoscope washer. An investigation using molecular epidemiology. Am J Med 1991; 91 (suppl.3B): 272-80S.

36. Gerding DN, Peterson LR, Vennes JA. Cleaning and disinfection of fiberoptic endoscopes: evaluation of glutaraldehyde exposure time and forced-air drying. Gastroenterology 1982; 83: 613-8.

37. Collins FM. Kinetics of tuberculocidal response by alkaline glutaraldehyde in solution and on an inert surface. J Appl Bacteriol 1986; 61: 87-93.

38. Collins FM. Bactericidal activity of alkaline glutaraldehyde solution against a number of atypical mycobacterial species. J Appl Bacteriol 1986; 61: 247-51.

39. Cole EC, Rutala WA, Nessen L, Wannamaker NS, Weber DJ. Effect of methodology, dilution, and exposure time on the tuberculocidal activity of glutaraldehyde-based disinfectants. Appl Environ Microbiol 1990; 56: 1813-7.

40 elson DB, Barkun AN, Block KP, Burdick JS, Ginsberg GG, Greenwald DA, et al. Transmission of infection by gastrointestinal endoscopy. Gastrointest Endosc 2001; 54: 824-8.

41. Meenhorst PL, Reingold AL, Groothuis D. Water-related nosocomial pneumonia caused by Legionella pneumophila serogroups 1 and 10. J Infect Dis 1985; 152: 356-64.

42. Wright EP, Collins CH, Yates MD. Mycobacterium xenopi and Mycobacterium kansasii in a hospital water supply. J Hosp Infect 1985; 6: 175-8.

43. Rutala WA, Weber DJ. Water as a reservoir of nosocomial pathogens. Infect Control Hosp Epidemiol 1997; 18: 609-16.

44. Wallace Jr RJ, Brown BA, Driffith DE. Nosocomial outbreaks/pseudo-outbreaks caused by nontuberculous mycobacteria. Annu Rev Microbiol 1998; 52: 453-90.

45. Noy MF, Harrison L, Holmes GKT, Cockel R. The significance of bacterial contamination of fiberoptic endoscopes. J Hosp Infect 1980; 1: 53-61.
## 病原体别感染拡大防止対策

## 1 多剂耐性菌

原則：多剤耐性菌による感染症を防止、低減化させる為には、①耐性菌の早期検出、②感染源や感染経路の特定と予防策による伝播・感染拡大の防止、③抗菌薬の使用法に関する点検と見直し、の三点が重要であるが、②と③については、別章で詳しく論じられるため、本章では、文献的な報告があるものを中心に骨子について記述する。

1.1 バンコマイシン耐性腸球菌：VRE

1.1.1 VRE による感染症患者を減少または患者予後を改善するためは、保菌率を下げる方が良い $ ^{1,5} $ 。(IIB)

1.1.2 ハイリスク患者を収容、治療する骨髓移植病棟などでは VRE 保菌者のスクリーニングと汚染・感染防止策（標準的な感染予防策、接触感染予防策）を実施する方が良い $ ^{6-9} $ 。(IIB)

1.1.3 長期抗菌薬使用患者では定期的便培養を行う方が良い $ ^{10} $ 。(IIB)

1.1.4 VRE の保菌者の多い ICU では、汚染・感染防止策をとる $ ^{11-13} $ 。(IIA)

1.1.5 第三世代セファロスポリンやバンコマイシンの投与は、術後の VRE 感染症のリスク因子になるため、予防投与は避けた方が良い $ ^{14-16} $ 。（IIB）

1.2 メチシリン耐性黄色ブドウ球菌：MRSA

1.2.1 MRSA 感染症を低下させるには、MRSA の保菌のスクリーニングをする方が良い $ ^{17} $ 。

(IIB)

1.2.2 MRSA 感染症を低下させるには、保菌者、感染症患者の個室収容、汚染・感染防止策（標準的な感染予防策、接触感染予防策）を行う $ ^{18,19} $ 。(IIA)

1.3 多剂耐性绿膜菌：MDRP

1.3.1 多剤耐性緑膜菌の感染症は、ICU 患者の予後を悪化させるので、その発生や拡散を予防する $ ^{20-24} $ 。（IIA）

1.3.2 抗菌薬の長期投与は多剤耐性緑膿菌の選択や定着を促進するため、行わない $ ^{25} $ 。(IIA)

### 1.4 薬剤耐性菌全般

1.4.1 薬剤耐性菌による感染症を減らす為には、看護師の配置を十分に行う方が良い $ ^{26,27} $ 。

(IIB)

## 2 結核菌

2.1 救急外来、削検室で、結核が疑われる患者に接する職員は、N95マスクを着用する。(IIIA)

2.2 外来の予診で結核が疑われる患者については、トリアージ（患者の予診に基づく疑似患者の選り分けと個室待機、優先診療）を行う。(IIIA)

2.3 活動性の結核症およびそれが疑われる患者を確認した場合は、医師は、直ちに、最寄りの保健所長に報告し、「結核症指定医療機関」に紹介し、転送する。(IVA)

2.4 活動性の結核患者に接した職員には、健康診断と予防投薬を行う。(IVA)

2.5 転送が困難な重症の排菌患者は、陰压空調の個室に収容し、患者に接する際は、手指衛生の
励行と N95 マスクを着用する。(IVA)

2.6 多剤耐性結核菌（MDR-TB、XDR-TB）と判定された場合は、直ちに、「結核症指定医療機関」の専門家に相談し対策を講じる。(IVA)

2.7 結核菌またはそれを含む臨床材料を扱う場合は、必要な防護具を付け安全キャビネットの中で操作する。(IVA)

## 3 バチルス属菌等非侵襲性環境細菌

3.1 バチルス属菌等の環境菌が血液培養で分離された場合は、輸液（ルート）、静脈注射薬などの汚染による可能性を第一に考慮し、調査と対策を行う $ ^{28,29} $ 。(IIA)

3.2 バチルス属菌等の環境菌の、同時多発事例や急激な分離件数の増加を確認した場合は、環境汚染調査を実施する方が良い。(IIIB)

## 4 飛沫感染、飛沫核感染（=空気感染）で伝播するウイルス等

4.1 麻疹、水痘、インフルエンザ、SARS等、飛沫感染や飛沫核感染（＝空気感染）で伝播拡散する病原体による院内感染には、伝播様式に応じた感染予防策を実施する。(IVA)

4.2 外来では、疑似患者については、トリアージを行う。(IIIA)

4.3 空気感染の感染源となりうる患者を入院させる場合は、陰圧空調の個室に収容する。(IVA)

4.4 SARS については、疑似患者の段階で、「患者」とみなして必要な法的手続きと感染拡大防止策を講じる。(IVA)

## 5 ヒト - ヒト感染が極めて低いとされている病原体

5.1 レジオネラ、アスペルギルス、非結核性抗酸菌など、ヒトからヒトへ感染する頻度が極めて低いとされている病原体による感染症については、標準的な感染予防策は必要ない。(IIIA)

5.2 給水（湯）設備やシャワーの蛇口（蓮口）などでレジオネラが繁殖しないよう、定期的な消毒とともに、水温を20℃以下、遊離残留塩素濃度を0.2～0.4mg/L（ppm）程度に常時保つか、貯湯槽で60℃以上、吹き出し口で55℃以上の熱湯を給湯する $ ^{30,31} $ 。（IVA）

5.3 レジオネラ感染症が施設内で発生した場合は、浴槽、リハビリ用プール、シャワーの蛇口（蓮口）などの湿潤箇所の培養検査と検出箇所の使用禁止、衛生管理を徹底する。(IIIA)

## 6 クロストリジウム・ディフィシル、ノロウイルスなど糞便、吐物を介して感染する病原体

6.1 クロストリジウム・ディフィシル：患者は個室収容かコホーティングを行い、汚染・伝播防止策（標準的な感染予防策、接触感染予防策）の徹底、排便介助、オムツ交換、糞便処理の際の手指衛生の徹底、通常洗剤により、手が触れる箇所の定期的拭き取りによる芽胞の物理的除去、高濃度汚染が疑われる場合は、次亜塩素酸ナトリウムなどを用いて消毒する。(IIA)

6.2 ガチフロキサシン、モキシフロキサシンの投与後に分離された株は、北米で流行している強毒型の BI/NAP1/027 株か否か検査する方が良い。(IIB)

6.3 重篤な腸管感染症状を呈する患者では強毒型の BI/NAP1/027 株を想定し、培養検査を行う方が良い。(IIB)