適體

適體 (源自拉丁文「aptus」表示” 適合” 的意思，和希臘文「meros」表示” 部位” 的意思) 是指與特定的目標分子結合的寡聚核酸或是 肽鏈。適體常常從大量的隨機序列被挑選出來，但自然的適體依舊存在如核糖開關中。適體可以用在學術研究亦可以當作大分子藥物應用在臨床診斷上。在適體的目標分子存在的情況下，適體能與核酶結合並進行自我剪下的動作，這些複合物能應用在研究、工業與臨床診斷上。

有高度專一性的適體能如下分類:

DNA or RNA or 構成的適體 (適體核酸); 由寡核酸構成。
肽鏈構成的適體 (適體肽鏈); 由可變的多肽區域與蛋白質的兩端結合而成。

適體核酸

適體核酸是一種核酸經由多次的體外選殖，或是經由 SELEX (systematic evolution of ligands by exponential enrichment 配體指數增強系統進化技術) 來與多種的目標分子，像小分子化合物、蛋白質、核酸，甚至細胞、組織與器官等等結合。適體常應用在生物技術與治療等方面，因為它們能提供” 對特定分子辨識” 的這種特性，就如同也常被應用的抗體 (脊椎動物體內原本就有抗體產生) 一般。適體能設計在試管中、能快速的利用化學方法合成、保留好儲存的特性與在治療應用上抽出較少或無免疫原性。

在 1990 年，兩所實驗室分別發展出了選殖技術: Gold 實驗室採用 SELEX (配體指數增強系統進化技術) 來選殖與 T4DNA 聚合酶結合的 RNA 配體；Szostak 實驗室則命名並採用體外選殖來選殖與許多有機染劑結合的 RNA 配體。 Szostak 實驗室也給這些用核酸為原料的配體定義了適體 (源自拉丁文 apto 為適合的意思) 這個名詞。兩年之後，Szostak 實驗室與另一吉利德科學公司也分別著手研究 使用體外選殖計畫來分別演化與有機染料、與人類凝血因子、與凝血酶結合的單股 DNA 配體。RNA 與 DNA 適體並沒有任何系統上的差異，相較於 RNA，DNA 適體依舊有比較高度的化學穩定性。

有趣的是，這種體外進行選殖的方法早在 20 多年前當索爾施皮格爾曼用複製系統來演化自我複製的分子時已經實現了。 此外，當發表體外選殖與 SELEX 技術的前一年，傑拉爾德・喬伊斯 已經用‘直接演化 (directed evolution)’技術來改變核酸酵素剪下的活性了。

因為適體的發現，許多的研究學者已經採用適體選殖來進行許多的應用與研究。在 2001 年，Ellington 實驗室將體外選殖在德克薩斯大學奧斯汀分校，與在公司 (Boulder, CO) 進行自動化大幅地將實驗時間從 6 星期縮短到 3 天。

在生物學與生物技術方面，人工的設計核酸配體備受注目，自然界中的適體在 2002 年前尚未被發現，分別由 領導與 Evgeny Nudler 領導的兩個研究團隊發現核酸為主的基因調控因子 (又名核糖開關) 與人工製造的適體有相似的分子識別特性。此外，發現新的基因調控模式，顯示更多支援 RNA 世界學說的證據。

DNA 與 RNA 構成的適體都對目標分子顯現出很強的親和力， 而且 DNA 與 RNA 構成的適體已經發現某些有共同的目標分子，像是溶酶體，凝血酶，愛滋病毒反式反應因子 (human immunodeficiency virus trans-acting responsive element (HIV TAR)), 高鐵血紅素，幹擾素 γ, 血管內皮生長因子 (VEGF), 前列腺抗體 (PSA), and 多巴胺。在目標分子是溶酶體、 HIV TAR、VEGF 與多巴胺，DNA 適體與 RNA 適體有很高的相似度，通常差在 DNA 是胸腺嘧啶而 RNA 是尿嘧啶取代；在目標分子是高鐵血紅素，凝血酶，與幹擾素 γ 的情況下，DNA 適體與 RNA 適體從不相關的選殖系統選殖出，且有各自獨特的序列。並非所有 DNA 適體與 RNA 適體相似顯現出 DNA 與 RNA 序列間相互功能的相似與差異，因此在功能與結構上還需更進一步的研究。

最近，與的概念被引進， 在預先計算適體與目標分子的平衡 、速率 (、常數) 與熱動能引數 (ΔH, ΔS) 的情況下選殖適體 是用來選殖的一項技術，經過僅僅幾回的選殖動作就能成功選殖出所需的適體。

現在在應用適體方面的治療歸功於美國的食品藥物管理機構 (FDA) 核准第一個適體藥物用來治療老人黃斑部病變 (AMD) 稱為 (Macugen)。此外，NeoVentures 生技公司 (http://www.neoventures.) 已經成功的商業化第一個以適體為基礎用來分析穀物黴菌毒素 (mycotoxins) 的診斷平臺。許多家公司紛紛開發適體與適體抗體來取代抗體。

未修飾的適體在血液中會馬上被清除，半生期從幾分鐘到幾小時不等，主要因為腎臟的核酸酶的降解與清除，結果造成適體與生俱來的低分子重。目前未修飾的適體主要應用在治療短暫停留的情況，如血液凝固；或是治療器官，像眼睛這種允許適體的區域性傳送。這種快速分解的特效能應用在體內診療上，例如：與粘蛋白 (tenascin) 結合的適體藉由應用在癌症治療方面。 許多修飾方法，如 2' 端氟取代的嘧啶、聚乙二醇 (PEG) 連結等等 (兩者皆用在 (Macugen) 方面，與 FDA 認可的適體)，科學家皆可獲並且能增加適體的半生期到天或者週的程度。

另外一種增加適體抗核酸酵素的方法是發展 (完全以非天然的 L 形式核酸骨架構成)，相同序列的 spiegelmer 與相對應的 RNA 適體有相同的結合特性，除了與目標分子的映象異構物結合。

除了發展適體治療技術之外，許多研究學者像是 Ellington 實驗室與 SomaLogic 公司 (Boulder, CO) 已經發展出藉由適體來描繪血漿蛋白的技術稱為適體血漿蛋白診療科技。此項科技將來能夠運用在多生物標記蛋白來幫助診斷生病 - 健康的狀態區別。人體學上的適體應用在 HER2 與 EGFR 膜蛋白，且已經被證明能應用在病理學上，藉由急速冷凍的組織來研究內部調控。

藉由收集從體外選殖與 SELEX 科技操作出來的資料，Ellington 實驗室已經發展出適體資料庫整合了全部已經發表的實驗資料。能由以下網址搜尋 http://aptamer.icmb.utexas.edu/.

更多關於適配子對手性多肽的檢測 可以閱讀 http://nanopore.weebly.com/

適體肽鏈

適體肽鏈是一種蛋白質被設計用來幹擾、阻斷其他在細胞中蛋白質的蛋白質互動作用，適體肽鏈由可變度高的多肽環接在 protamersein 骨架的兩端上。這種雙重構造限制大大的增加結合時的親和力，與抗體的結合力可相比擬 (奈米分子程度)。

多肽環的長度大概有 10 到 20 個胺基酸，骨架由好的溶解度與緊密度特性的蛋白質構成。現在，細菌蛋白 -A 是最常用的骨架蛋白，多肽環插進骨架蛋白的還原活性位 (野生種的蛋白中是 - Cys-Gly-Pro-Cys - 環) 兩個半胱氨酸側鏈能夠形成雙硫鍵。

適體肽鏈能用別種系統來進行選殖，現今最常用的是酵母菌 雙雜交技術.

配體調控的適體肽鏈 (Ligand Regulated Peptide Aptamers (LiRPAs)) 選殖技術已經被實現。藉由使用三聚 FKBP - 雷帕黴素 - FRB 結構與隨機的多肽和目標分子間的互動作用，且運用雷帕黴素或非免疫抑制相似物來調控，進而從骨架蛋白上取代 7 個胺基酸肽鏈。

另外可以從肽鏈合併後的集合中選殖出適體肽鏈藉由噬菌體表現 與其他的表面表現技術像是、、 與，這些實驗程式也被稱為。從生物掏洗得到的肽鏈中，可以被視為一種適體肽鏈。這些從肽鏈合併後的集合中掏選出的肽鏈已被儲存在特定的資料庫稱為中。 可以從以下網站中獲得 (https://web.archive.org/web/20121116054757/http://immunet.cn/mimodb/.)

適體促發現生物標記技術 (AptaBiD)

適體促發現生物標記技術 (AptaBiD 或 Aptamer-Facilitated Biomarker Discovery) 是一項應用在發現生物標記的技術。適體促發現生物標記技術用使用多回的製造適體或者製造適體堆來與細胞上不同的分子標

記物結合並能促進偵測生物標記。主要分為三個階段: (i) 多回的選殖結合目標細胞生物標記的適體；(ii) 藉由適體從目標細胞上分離生物標記；(iii) 應用質譜儀來辨別生物標記。適體促發現生物標記技術的主要特點是製造合成的親和探針 (適體) 同時發現生物標記。在適體促發現生物標記技術中，適體被設計與細胞表面的生物標記的原本狀態與構型結合。除了促進辨識生物標記，這些適體還能直接在體內用來分離細胞、顯現細胞、追蹤細胞，甚至還能被用來調整細胞受體與配送不同抗原 (例如:siRNA 與藥物)

進細胞的活性。