ブロッコリ乳酸菌醗酵物からなる抗酸化機能賦活剤。乳酸菌がビフィドバクテリウム属またはラクトバチルス属であることを特徴とする請求項1に記載の抗酸化機能賦活剤。請求項1に記載の抗酸化機能賦活剤を配合したことを特徴とする、歯周病、動脈硬化症、網膜症の予防または症状改善用の経口組成物。本発明は、抗酸化機能賦活剤およびそれを配合した酸化ストレスに関連する諸疾病の予防改善剤を提供することを課題とする。本発明者らは、かかる事情に鑑み鋭意検討を重ねた結果、驚くべきことにブロッコリーの乳酸菌醗酵処理物に優れた抗酸化機能賦活効果および酸化ストレスに関連する諸疾病に対する予防改善効果が存在することを見出し、本発明を完成するに至った。すなわち、本発明は、1~3項の抗酸化機能賦活剤およびそれを配合した経口組成物を提供するものである。項1.ブロッコリ乳酸菌醗酵物からなる抗酸化機能賦活剤。項2.乳酸菌がビフィドバクテリウム属またはラクトバチルス属であることを特徴とする項1に記載の抗酸化機能賦活剤。項3.項1に記載の抗酸化機能賦活剤を配合したことを特徴とする、歯周病、動脈硬化症、網膜症の予防または症状改善用の経口組成物。項4項2の乳酸菌が、ビフィドバクテリウムロンガム、ビフィドバクテリウムブレーベ、ラクトバチルスプランタラムおよびラクトバチルスペントサスから選ばれる一種以上であることを特徴とする項2に記載の抗酸化機能賦活剤。本発明の、抗酸化機能賦活剤は、体内の抗酸化機構を正常化もしくは活性化し、血清の抗酸化力を向上させ、血清中の過酸化脂質の発生量を抑制することができる。さらに、前記効果より、酸化ストレスと関連があるとされている動脈硬化症や歯周病などの疾病の予防や改善効果が期待できる。特に、糖尿病患者に対する安全性の懸念がないと考えられることから、糖尿病患者の合併症予防手段として有効である。本発明における抗酸化機能賦活剤は、ブロッコリを乳酸菌で醗酵処理することにより得られる。なお、本願明細書において配合比率は、特に断りのない限り配合質量比率を表す。本発明に用いるブロッコリは、地中海原産のアブラナ科アブラナ族の植物であり、ミドリハナヤサイ、メハナヤサイとも呼ばれる緑黄色野菜である。乳酸菌醗酵に供する部位は、花蕾、茎、葉であり、その中でも特に花蕾、茎が好ましい。本発明に用いる乳酸菌は、次に挙げる菌群が例示される。ビフィドバクテリウムロンガムBifidobacteriumlongum、ビフィドバクテリウムブレーベBifidobacteriumbreve、ビフィドバクテリウムビフィダムBifidobacteriumbifidum、ビフィドバクテリウムインファンティスBifidobacteriuminfantis、ビフィドバクテリウムカテヌラタムBifidobakuteriumcatenulatum、ビフィドバクテリウムシュードロンガムBifidobacteriumpseudolongum、ビフィドバクテリウムアニマリスBifidobacteriumanimalis等に代表されるビフィドバクテリウム属。ペディオコッカスアシディラクチシPediococcusacidilactici、ぺディオコッカスペントサセウスPediococcuspentosaceus等に代表されるペディオコッカス属。エンテロコッカスフェカリスEnterococcusfaecalis、エンテロコッカスフェシウムEnterococcusfaecium等に代表されるエンテロコッカス属。ラクトバチルス属の中では、ラクトバチルスプランタラムLactobacillusplantarum、ラクトバチルスペントサスLactobacilluspentosus、ラクトバチルスカゼイLactobacilluscasei、ラクトバチルスラムノサスLactobacillusrhamnosus、ラクトバチルスヘルベチクスLactobacillushelveticus、ラクトバチルスアシドフィルスLactobacillusacidphilus、ラクトバチルスガセリLactobacilusgaseri、ラクトバチルスラクチスLactobacilluslactis等である。この中でもビフィドバクテリウム属およびラクトバチルス属が好ましい。これらの乳酸菌は、単独もしくは複数の乳酸菌を組み合わせて用いることができる。個々の乳酸菌株には、人体にとって好ましい整腸作用や免疫賦活作用に代表される固有の機能性を有しており、複数の乳酸菌を組み合わせると、これらの種々の機能性が本発明の抗酸化機能賦活機能と複合されて発揮されることも期待できる。乳酸菌醗酵処理を行う前のブロッコリの前処理としては、破砕、搾汁、濃縮、乾燥などの処理を施した後に、加熱殺菌を行う。具体的には、ブロッコリの破砕物、搾汁液、搾汁上清液搾汁のろ過処理、遠心処理などにより得られる液体物、搾汁濃縮液、水抽出物などを加熱殺菌処理の後に乳酸菌醗酵処理を行う。この中でも破砕物または破砕物と搾汁を混合したものを用いることが好ましい。具体的には、醗酵処理する前のブロッコリは、不溶性固形分が5重量以上の液状ないしペースト状のものが好ましく、さらには50重量以上のものがより好ましい。ここで言う不溶性固形分量は、果汁飲料の不溶性固形分分析法、すなわち試料10mlを遠沈管に採取し、ローター半径14.5cmの遠心分離機を用いて、毎分3000回転、10分間遠心分離を行い、上清部と沈殿部を分けて重量測定し、沈殿部分の重量パーセントを測定する事により得られる数値である。流動性が悪く前記遠心分離の条件では分離しにくい場合は、精製水により正確に2倍希釈して均一分散した試料を遠心分離し、沈殿物の重量を2倍して不溶性固形分量とすることにより測定することも可能である。乳酸菌醗酵の方法としては、常法に従い実施するものであれば特に限定されるものではない。例えば下記の方法によって実施することができる。まず、乳酸菌スターターを調製し、ブロッコリに添加する。この際、乳酸菌スターターの性状、組成、調製法に特に制限はなく、常法にしたがって調製される。乳酸菌スターターとしては、液状、凍結状、粉末状のものが使用できるが、添加前に液状とすることが好ましい。均質な醗酵を行うため、ブロッコリに水を加えることも可能である。但し、この場合、不溶性固形分量が5重量以上を維持することが必要である。ブロッコリへの乳酸菌スターターの接種量は、ブロッコリに対し、1グラムあたり少なくとも10の6乗以上が好ましく、10の7乗以上がより好ましい。また、乳酸菌スターター中の乳酸菌数は、乳酸菌スターターの量、ブロッコリの量によって適宜設定でき、ブロッコリに接種する乳酸菌数がこの値を満たせば特に制限されないが、液状のスターターの場合、乳酸菌数が、1グラムあたり少なくとも10の8乗以上が好ましく、10の9乗以上がより好ましい。乳酸発酵処理時の温度は、20°C~45°C、好ましくは25°C~40°Cで行うことができる。乳酸発酵の終点は、乳酸酸度及びpHを測定して決定することができる。すなわち、乳酸菌発酵培地の乳酸酸度が上昇せず、pHも下がらない時点を醗酵の終点とすることが好ましい。終点の前後で醗酵を止めると品質の均一性が確保しやすいというメリットがある。醗酵時間は使用する菌種や醗酵条件によって異なるが、一般的には6時間~72時間、好ましくは16時間~36時間である。乳酸菌醗酵に用いるブロッコリには、醗酵処理時において乳酸菌以外の細菌が増殖するのを防止する目的で、適宜少量の食塩に代表されるナトリウム塩、緑茶カテキンに代表される植物抽出物等を添加することができる。これらの添加量は、ナトリウム換算で0.05~1重量、緑茶カテキンでは0.01~0.2重量である。また、ブロッコリには、乳酸菌の醗酵に必要な糖分の含量が少ないため醗酵効率が悪い場合が生じる。この場合は、醗酵を助けるためにブドウ糖などの糖質を適量添加することができる。糖質の添加量は、ブロッコリに対し0.1~10重量である。さらに乳酸菌醗酵過程のpH制御を目的として、pH調整剤の添加も可能である。乳酸醗酵に適したpH調整剤としては、酢酸ナトリウム、リン酸三カリウム、リン酸水素二カリウム、リン酸二水素カリウムが挙げられるが、pH緩衝作用を有するものであればこれらに限定されるものではない。一般的なpH調整剤の添加量は、ブロッコリに対し0.01~1重量である。また、保存安定性を確保するために防腐剤などを添加することもできる。乳酸菌醗酵処理したブロッコリはそのままの状態で使用することができるが、保存安定性や取扱い性、使用感などを向上させる理由から、濃縮、乾燥、造粒等を行うことができる。また、水不溶分をろ過して除去することも可能である。本発明の抗酸化機能賦活剤は経口組成物として摂取する。経口組成物としては、特に限定しないが、医薬品、医薬部外品、特定保健用食品、疾病者用食品、栄養機能食品、栄養補助食品として使用することができる。これら経口組成物の剤形も特に限定するものではないが、例えば、ハードカプセル、ソフトカプセル、錠剤、チュアブル錠、粉末剤、顆粒剤、各種形態の飲料、フィルム剤などとして使用することができる。通常、本発明の抗酸化機能賦活剤は、乾燥物換算でこれら経口組成物全量に対して、5~60質量、好ましくは10~50質量配合する。以下、本発明を具体的に説明するが、本発明は下記の例に限定されるものではない。なお、以下特に断りのない限りは質量を示す。ブロッコリの乳酸菌醗酵処理下記にしたがって、ブロッコリの乳酸菌醗酵処理を行った。BifidobacteriumlongumBB536をMRSbroth培地を用いて、それぞれ37°C、24時間前培養し、得られた菌液を乳酸菌スターターとして用いた。ブロッコリの花蕾および茎を破砕し、ピューレ状とした後に、前記で調製した乳酸菌スタータを2添加して接種し、24時間、37°Cの条件で培養した。培養後得られたブロッコリ乳酸菌醗酵物は凍結乾燥し、粉末化した。得られた粉末を、以下の実験においてブロッコリ乳酸菌醗酵物として使用した。ブロッコリ乳酸菌醗酵物のラットへの経口投与試験8週令の雄性Wistar系ラットを、一群6匹で下記に示した4群において12週間の飼育を行った。餌および水は自由摂取とした。飼育後、血清および歯周組織に関する下記分析を実施した。1:通常餌群MF粉末飼料、オリエンタル酵母工業株式会社2:高コレステロール餌群通常餌に1cholesterolおよび05cholicacidを添加3:ブロッコリ添加餌群高コレステロール食餌に5ブロッコリピューレ凍結乾燥物を添加4:ブロッコリ醗酵物添加餌群高コレステロール食餌に5ブロッコリ乳酸菌醗酵物を添加血清中のヘキサノイルリジンおよび血清総抗酸化能の測定前記方法で12週間飼育した後に、さらに24時間の絶食を行った後にラット心臓より採血を行った。得られた血液を室温で1時間放置した後、遠心分離処理4°C、1500g、15分することによって血清を得た。得られた血清におけるヘキサノイルリジンの濃度は、ELISAキット日研ザイル社日本老化制御研究所製を用いて測定し、血清総抗酸化能は、抗酸化能測定キットPAO日研ザイル社日本老化制御研究所製を用いて測定した。なお、測定手順については各キットの添付書を参考に実施した。得られた結果を図1、2に示す。図1に示したとおり、通常餌群に比べ、高コレステロール餌群はヘキサノイルリジン濃度が有意に高くなった。これに対して高コレステロール餌にブロッコリまたはブロッコリ乳酸菌醗酵物を5添加した群では、高コレステロール餌群に対して有意にヘキサノイルリジンの濃度が低くなり通常餌群に対しても低い値を示した。また、図2に示したとおり、血清総抗酸化能については、通常餌群および高コレステロール餌群に比べ、高コレステロール餌にブロッコリまたはブロッコリ乳酸菌醗酵物を5添加した群では有意に高い抗酸化能を示した。更に、高コレステロール餌にブロッコリ乳酸菌醗酵物を添加した群は、ブロッコリを添加した群に対しても有意に高い抗酸化能を示した。ヘキサノイルリジンは、脂質の過酸化の初期段階を把握するための酸化ストレスバイオマーカーであり、疾病との関連性ではヒト動脈硬化病変部位に局在することが免疫学的に証明されていることから、動脈硬化症の予防改善効果が期待できる。歯周組織における歯槽骨レベルおよび破骨細胞数の測定前記の方法に従い12週間飼育した後、ラットを麻酔によって安楽死させた。直ちに、上顎骨の左側を切除し、4パラホルムアルデヒドを含む0.1molLリン酸緩衝液pH7.4中で1日間固定後、さらに、10EDTA四ナトリウム水溶液に4°C、2週間浸漬することによって脱灰を行った。脱灰後、パラフィン固定した各歯の頬舌部位をヘマトキシリンにて染色した。顕微鏡を用いた組織学的観察は、一人の試験者が盲検によって行った。ヘマトキシリンエオジン染色によって歯槽骨吸収の程度を評価した。セメントエナメル接合部と歯槽骨頂の直線距離μmを測定した。さらに、破骨細胞の同定には、TRAP染色を用いた。歯槽骨表面に出現するTRAP陽性破骨細胞数をカウントし、個mmとして算出した。得られた結果を、図3および4に示す。歯肉組織におけるGSHGSSG比の測定前記方法に従って安楽死させた後に、歯肉部を切除し、GSHGSSG比を測定した。総グルタチオンレベルとGSSGレベルは、GSSGGSH定量キット同仁化学研究所社製を用いて測定した。なお、GSSGレベルの測定においては、2-ビニルピロリドンによりGSHをブロックすることによって測定した。測定結果を図5に示す。歯周組織におけるiNOSおよびNF-κBの遺伝子発現の測定前記方法に従って安楽死させた後に、右歯肉部を切除した。切除した歯肉部は液体窒素下で凍結させた後に粉砕し、総RNAをtotalRNAMiniKitを用いて抽出した。得られた総RNAをDNaseIで処理することによってゲノムDNAを除去した。次に、PrimeScriptRTReagentKitを用いた逆転写反応により、総RNA1.0μgから一本鎖cDNAを合成した。得られたcDNAを鋳型にして、iNOSとNFκBのmRNA発現をリアルタイムPCRにより測定した。定量的リアルタイムPCRには、PremixExTaq、および、AssayonDemand、GeneExpressionProductsRn00561646m1、Rn01413849g1Nfkb2、Rn99999916s1を用いた。全ての定量データは、glyceraldehyde3phosphatedehydrogenaseの発現レベルで補正した。測定結果を図6および7に示す。図3および4に示したとおり、通常餌群に比べ、高コレステロール餌群はTRAP陽性の破骨細胞数が有意に増加し、歯周組織においても組織学的に有意な歯槽骨吸収を示している。これに対して、ブロッコリ乳酸醗酵物添加餌群では、高コレステロール餌群に対して有意に破骨細胞数が少なく、歯周組織においても組織学的に有意に歯槽骨吸収抑制効果を示している。この事実は、破骨細胞の分化が低濃度の過酸化水素で促進され、TRAP陽性の破骨細胞が誘導され、さらにこの系において過酸化水素の還元剤であるNACを添加すると、破骨細胞の分化は抑制されるという報告と一致する。科学研究費補助金データベース:研究課題番号16570109したがって、図3および4に示したとおり、ブロッコリ乳酸菌醗酵物の抗酸化機能賦活効果により、骨減少を伴う歯周病を予防改善し得ると考えられる。図5に、還元型グルタチオンGSHと酸化型グルタチオンGSSGの比の測定値を示している。GSHは動物組織内で主要な抗酸化物質であり、グルタチオンペルオキシダーゼの作用の下で、GSHは高い割合で過酸化水素などを除去し、プロセス中にそれ自体がGSSGになる。生体が酸化ストレスにさらされると、GSSG蓄積の結果として、GSH/GSSGの比率は低下する。したがって、GSH/GSSGの比率の測定は哺乳動物における酸化ストレスの状態を評価するために有意な指標とされている。図5に示したとおり、高コレステロール餌群は酸化ストレスが生じやすいため、GSH/GSSG比は通常餌群に対して有意に低下している。これに対してブロッコリ乳酸菌醗酵物添加餌群は低下したGSHGSSG比を有意に上昇させている。このことから、歯周組織においても、ブロッコリ乳酸菌醗酵物は酸化ストレスを解消し、組織の抗酸化性を維持していることがわかる。図6には、歯周組織における、一酸化窒素を産生する酵素であるiNOSに対するmRNAの量と、細胞の解糖系中の酵素であるGAPDHに対するmRNAの量との比であるiNOSGAPDH比に関する測定結果を示している。GAPDHは常時継続的に発現しているハウスキーピング蛋白質であるため、一般的にmRNAの発現量の変化を定量する場合においてコントロールとして用いられている。図6に示したとおり、高コレステロール餌群は通常餌群に比べて有意に一酸化窒素を産生する酵素であるiNOS生成のmRNA発現を亢進させているが、ブロッコリ醗酵物はその亢進を有意に低下させていることがわかる。図7には、歯周組織における、酸化ストレスなどの刺激により活性化されることが知られているNF-κBに対するmRNAの量と、細胞の解糖系中の酵素であるGAPDHに対するmRNAの量との比であるNF-κBGAPDH比に関する測定結果を示している。図7に示したとおり、高コレステロール餌群は通常餌群に比べてNF-κBのmRNA発現を亢進させているが、ブロッコリ醗酵物はその亢進を低下させていることがわかる。図6および7に示した結果より、本発明のブロッコリ乳酸菌醗酵物の抗酸化効果が、生体が有する抗酸化機能を亢進することにより得られるものであると推察できる。抗酸化物質を摂取することで体内の酸化性物質を消去する手段の場合、体内における抗酸化物質の量に抗酸化効果が左右されるため、酸化性物質の消去に必要な相当量の抗酸化物質を摂取し、体内に取り込む必要がある。また、酸化性物質は持続的に体内で発生していると考えられる事から、抗酸化物質の摂取を継続する必要もある。一方、本発明では体内の遺伝子の発現を亢進させることで抗酸化効果を発揮することから、遺伝子の発現亢進に必要な量を体内に取り込めれば十分な効果を得ることができ、また、ある程度の継続的な効果も期待できる点で抗酸化物質による方法に比べ優れていると考えられる。以下、本発明に係る抗酸化機能賦活剤の製造例および同抗酸化機能賦活剤を配合した経口組成物の実施例の処方を挙げるが、本発明は下記の処方に限定されるものではない。なお、特に指定の無いかぎり配合量は質量部を示す。醗酵処理例1BifidobacteriumlongumSH1株を前培養用培地130ブロッコリーピューレ、2グルコース、1酵母エキス、1リン酸二カリウム、025酢酸ナトリウム、残りは蒸留水を用いて、37°C、16時間前培養し、得られた菌液をスターターとして用いた。ブロッコリーピューレを95°C、10分間加熱殺菌、冷却したものに前記で調製したスターターを2添加して接種し、16時間、37°Cの条件で培養した。得られた醗酵物のpHは40、乳酸酸度は09であった。醗酵処理例2LactobacilluspentosusSH2株を前培養用培地210グルコース、5酵母エキス、2リン酸水素二カリウム、05酢酸ナトリウム、残りは蒸留水を用いて、30°C、24時間前培養し、得られた菌液をスターターとして用いた。ブロッコリーピューレを同量の蒸留水で2倍に希釈し、95°C、10分間加熱殺菌、冷却したものに前記で調製したスターターを1添加して接種し、48時間、25°Cの条件で培養した。得られた発酵物のpHは37、乳酸酸度は12であった。醗酵処理例3BifidobacteriumbreveSH3株を前述の前培養用培地1を用いて、それぞれ37°C、24時間前培養し、得られた菌液をスターターとして用いた。ブロッコリーピューレを同量の蒸留水で2倍に希釈、5グルコースを添加したものを110°C、10分間加熱殺菌、冷却したものに前記で調製したスターターを5添加して接種し、24時間、37°Cの条件で培養した。得られた発酵物のpHは39、乳酸酸度は10であった。醗酵処理例4BifidobacteriumlomgumSH1株およびLactobacillusplantarumSH4株を前述の前培養用培地2を用いて、それぞれ30°C、24時間前培養し、得られた菌液をスターターとして用いた。ブロッコリーピューレを110°C、10分間加熱殺菌、冷却したものに、前記で調製した2種類のスターターを1:1で混合したものを5添加して接種し、36時間、30°Cの条件で培養した。得られた発酵物のpHは38、乳酸酸度は11であった。処方例1乳酸菌醗酵飲料成分配合量醗酵処理例1の醗酵物50りんご濃縮混濁果汁10ラクチュロースシロップ純度501寒天1アスコルビン酸ナトリウム0.1スクラロース0.01香料0.15無水クエン酸適量精製水残部合計100pH4.9処方例2野菜飲料成分配合量醗酵処理例2の醗酵物30オレンジ搾汁20りんご濃縮混濁果汁1/410レモン濃縮混濁果汁400GPL1.8ラクチュロースシロップ500.5アスコルビン酸ナトリウム1スクラロース0.01無水クエン酸適量精製水残部合計100pH4.2処方例3飲料成分配合量醗酵処理例3の醗酵物10コラーゲン蛋白質加水分解物5エリスリトール5アスコルビン酸ナトリウム0.5スクラロース0.005ステビア混合物0.01無水クエン酸適量精製水残部合計100pH4.0処方例4飲料成分配合量醗酵処理例4の醗酵物10マルチトール5コラーゲン蛋白質加水分解物1リンゴ濃縮果汁1/51グルコサミン0.7アスコルビン酸ナトリウム0.1ステビアエキス0.1無水クエン酸適量精製水残部合計100pH4.0処方例5酸性飲料成分配合量醗酵処理例1の醗酵物30ミルクオリゴ糖1グルコン酸カルシウム0.67クエン酸無水0.7グアーガム0.3酸化マグネシウム0.12スクラロース0.01アスコルビン酸ナトリウム0.1精製水残部合計100pH3.7処方例6ゼリー成分配合量醗酵処理例1の醗酵物20エリスリトール7.5サメ軟骨抽出物コンドロイチン硫酸C含有1.0無水クエン酸0.5カラギナン0.3グルコマンナン0.2クエン酸3ナトリウム0.2香料0.2アスコルビン酸ナトリウム0.1精製水残部合計100pH3.8処方例7スポーツ飲料成分配合量果糖8醗酵処理例3の醗酵物5食塩2重曹2精製水残部合計500pH6.8処方例8粉末茶成分配合量ウーロンチャエキス10醗酵処理例1の醗酵物の凍結乾燥物10香料3デキストリン残部合計100処方例9チュアブル錠成分配合量醗酵処理例4の醗酵物の凍結乾燥物30ステアリン酸マグネシウム10アスパルテーム4香料1キシリトール残部合計100処方例10焼き菓子成分配合量薄力粉17.85醗酵処理例3の醗酵物10還元水あめ9米油2.7ベーキングパウダー0.3香料0.15合計40処方例11ゼリー飲料成分配合量オリゴ糖シロップ27還元水あめシロップ27醗酵処理例2の醗酵物20濃縮果汁7.2グルコマンナン5.4pH調整剤4.5ゲル化剤2.7香料0.45精製水残部合計100処方例12カプセル剤300mg個成分配合量醗酵処理例1の醗酵物の凍結乾燥物150微粒子結晶セルロース60乳糖25トコフェロール6コーンスターチ残部合計300処方例13錠剤250mg錠成分配合量ビタミンC50醗酵処理例2の醗酵物の凍結乾燥物50セルロース粉末25コーンスターチ残部合計250