"有効成分であるNK細胞を含む健常人用癌発症抑制剤。前記NK細胞が活性化NK細胞である請求項1に記載の健常人用癌発症抑制剤。活性化NK細胞を健常人に投与することを特徴とする健常人の癌発症抑制方法。前記活性化NK細胞は、前記健常者由来のNK細胞である請求項3に記載の癌発症抑制方法。有効成分であるNK細胞を含むワクチンの抗体産生能増強剤。前記ワクチンが肝炎ワクチンである請求項5に記載の抗体産生能増強剤。前記肝炎ワクチンがB型肝炎ワクチンである請求項6に記載の抗体産生能増強剤。前記NK細胞は活性化NK細胞である請求項5~7のいずれか1に記載の抗体産生能増強剤。有効成分であるNK細胞と有効成分である肝炎ワクチンを組み合わせたことを特徴とする肝炎治療剤。前記肝炎ワクチンがB型肝炎ワクチンである請求項9に記載の肝炎治療剤。有効成分であるNK細胞を含むワクチンの抗体産生能増強剤、及び肝炎ワクチンを含む肝炎治療用キット。前記肝炎ワクチンがB型肝炎ワクチンである請求項11に記載の肝炎治療用キット。以下の工程12又は12を含む患者のワクチンの抗体産生能増強方法。1活性化NK細胞を患者に投与する工程2ワクチンを該患者に投与する工程1ワクチンを患者に投与する工程2活性化NK細胞を該患者に投与する工程前記活性化NK細胞は、前記患者由来のNK細胞である請求項13に記載の抗体産生能増強方法。前記ワクチンが肝炎ワクチンである請求項13又は14に記載の抗体産生能増強方法。前記肝炎ワクチンがB型肝炎ワクチンである請求項15に記載の抗体産生能増強方法。以下の工程12又は12を含む肝炎治療方法。1活性化NK細胞を患者に投与する工程2ワクチンを該患者に投与する工程1ワクチンを患者に投与する工程2活性化NK細胞を該患者に投与する工程前記活性化NK細胞は、前記患者由来のNK細胞である請求項17に記載の抗体産生能増強方法。前記肝炎がB型肝炎である請求項17又は18に記載の肝炎治療方法。癌細胞のelimination過程では、NK細胞、NKT細胞、γδT細胞、マクロファージ、樹状細胞、T細胞のさまざまな免疫細胞が参画するが、癌細胞排除にどの免疫細胞が主要なのか不明である。そこで、本発明者らは、該主要な免疫担当細胞が判明すれば、その機能を人為的に高めることにより、免疫監視能力が向上し、elimination過程を再強化させることができ、さらにこの再強化を行うことで、強化しない場合と比較し、最終的に癌発症の低下が期待されると考えた。さらに、本発明者らは、先に述べたワクチン療法においても、癌発症と同じく加齢によって、NK細胞、樹状細胞の機能低下、ナイーヴT細胞、B細胞の減少は外来抗原に対する免疫反応能力が低下すること、事実、B型肝炎ワクチンにおいては、一部の健常者、HIV陽性患者、透析患者、アルコール中毒患者で抗体が誘導されず、無低反応性が指摘されているという知見を基にして、このような無低反応性は最終的に慢性肝炎、肝癌のリスクが高まると考えた。さらに、本発明者は、無低反応性の原因となっている免疫反応能力の低下を再び高めることによって、ワクチン効果が誘導され、最終的には癌、特に肝癌の予防が可能となると考えた。そこで、本発明者は、上記知見を基にして、癌発症抑制剤、抗体産生能増強剤及び肝炎治療剤を提供することを課題とした。本発明者は、上記課題を解決するために鋭意研究を重ねた結果、NK細胞を投与することにより癌の発症を抑制し、さらにはNK細胞とワクチンを患者に投与することにより、抗体産生能が増強することを見出して、本発明を完成した。つまり、本発明は、以下の通りである。1.有効成分であるNK細胞を含む健常人用癌発症抑制剤。2.前記NK細胞が活性化NK細胞である前項1に記載の健常人用癌発症抑制剤。3.活性化NK細胞を健常人に投与することを特徴とする健常人の癌発症抑制方法。4.前記活性化NK細胞は、前記健常者由来のNK細胞である前項3に記載の癌発症抑制方法。5.有効成分であるNK細胞を含むワクチンの抗体産生能増強剤。6.前記ワクチンが肝炎ワクチンである前項5に記載の抗体産生能増強剤。7.前記肝炎ワクチンがB型肝炎ワクチンである前項6に記載の抗体産生能増強剤。8.前記NK細胞は活性化NK細胞である前項5~7のいずれか1に記載の抗体産生能増強剤。9.有効成分であるNK細胞と有効成分である肝炎ワクチンを組み合わせたことを特徴とする肝炎治療剤。10.前記肝炎ワクチンがB型肝炎ワクチンである前項9に記載の肝炎治療剤。11.有効成分であるNK細胞を含むワクチンの抗体産生能増強剤、及び肝炎ワクチンを含む肝炎治療用キット。12.前記肝炎ワクチンがB型肝炎ワクチンである前項11に記載の肝炎治療用キット。13.以下の工程12又は12を含む患者のワクチンの抗体産生能増強方法。1活性化NK細胞を患者に投与する工程2ワクチンを該患者に投与する工程1ワクチンを患者に投与する工程2活性化NK細胞を該患者に投与する工程14.前記活性化NK細胞は、前記患者由来のNK細胞である前項13に記載の抗体産生能増強方法。15.前記ワクチンが肝炎ワクチンである前項13又は14に記載の抗体産生能増強方法。16.前記肝炎ワクチンがB型肝炎ワクチンである前項15に記載の抗体産生能増強方法。17.以下の工程12又は12を含む肝炎治療方法。1活性化NK細胞を患者に投与する工程2ワクチンを該患者に投与する工程1ワクチンを患者に投与する工程2活性化NK細胞を該患者に投与する工程18.前記活性化NK細胞は、前記患者由来のNK細胞である前項17に記載の抗体産生能増強方法。19.前記肝炎がB型肝炎である前項17又は18に記載の肝炎治療方法。本発明の癌発症抑制剤及び癌発症抑制方法により、健常人の癌の発症を抑制した。さらに、本発明の抗体産生能増強剤及び抗体産生能増強法方法により、ワクチン単独では抗体価が上昇しにくい症例に対しても抗体価を上昇させることができた。NK細胞の培養増殖以下の工程により、自己末梢血リンパ球の培養増殖を行うことにより、活性化NK細胞の培養増殖を行った。工程1リン酸緩衝液PBS20mlに対し、オルソクローンOKT3:0.1μl/ml抗CD3抗体,ヤンセンファーマより入手及びMABCAMPATH:20~40μl/ml抗CD52抗体、バイエルより入手可の溶液を作成した。工程2工程1の溶液を、それぞれ別の225cm2のフラスコに分注し、4°Cで一晩静置させた。工程3工程2のフラスコをPBSで2回洗浄した。工程4健常人からヘパリン加末梢血30mlを採取し、FicollPaquePlusを媒体として用いた密度勾配遠心法により、末梢血単核球PBMCを分離した。工程5IL-2500単位/ml、Chiron社を含むNKGM培地コージンバイオ株式会社より入手に、工程4で分離したPBMCを0.5~1×106/mlの濃度で浮遊させ、さらに患者血漿2~10を加えて培養液とした。この段階で培養液は60~120mlになった。この培養液を、工程3で得た固相化抗体処理した培養フラスコに添加した。その後、5CO2培養器内37°Cの環境下で培養した。工程6培養開始から3~5日目に、多数のコロニーが作られ、芽球化blast化したことを確認して、培養液を20~100追加し、さらにIL-2を500単位/ml添加した。通常この時期は培養開始してから3日目であった。工程7工程6で培養液を追加してから対数増殖期に入った1~3日目多くは1日目に、活性化リンパ球を含んだ培養液を、NKGM-B1リットル入りバッグに注入した。さらに、これを2~3バッグに分注した。分注後3~4日間隔で1バッグあたり、NKGM培地を100~300ml、及び、IL-2を10~20万単位、添加した。工程8培養開始14~21日目に、バッグから培養液を遠心管に移し、これを600Gで10分遠心した。遠心管からペレットを残して上清を吸引した後、ペレットにPBSを加え洗浄し、再び遠心操作をおこなった。この作業を2~3回繰り返し、培養リンパ球をよく洗浄した。最後に、ペレットを集め、生理的食塩水100mlに浮遊させ、これにヒト血清アルブミン2~4添加した。最後に、無菌テスト、エンドトキシンテストが陰性であることを確認した。凍結保存と解凍培養開始後、3~7日で培養細胞を洗浄し、保存液であるKMバンカーコージンバイオとともに凍結用チューブにいれ、液体窒素タンク内で-190°C以下に保って保存した。解凍後は、IL2添加NKGM培養液で10~14日間培養した。培養液中の活性化リンパ球の解析結果上記培養増殖したNK細胞表面には、CXCR3ケモカイン受容体、NKG2D、TRAIL、特異的な活性化受容体NKp30、NKp44、NKp46の発現が見られた。加えて、培養NK細胞には、持続的IFNγ産生があり、少なくとも3週間の培養まで、K562を標的した細胞傷害活性が高く維持されることが確認された。以上により、溶液中には活性化したNK細胞が高濃度で存在していることを確認した。活性化NK細胞の投与による癌発症抑制の確認健常人から得られた活性化NK細胞を含む培養リンパ球を該健常人に投与した。そして、該投与された健常人と非投与健常人の癌発症率を確認した。詳細は、以下の通りである。NK細胞の投与実施例1の培養リンパ球を解凍し、IL2添加NKGM培養液で10~14日間培養後これを洗浄し、100mlの生理的食塩水に浮遊させ健常人の静脈から点滴投与した。1回あたり投与した培養自己リンパ球数は、10.7×109個であった参照:図1。加えて、投与したリンパ球のうち、CD3CD56NK細胞またはCD56リンパ球をもっとも多く含んでいた図2。なお、投与の詳細は以下の通りでる。健常人のNK細胞投与群と非投与群健常人一人につき10回分またはそれ以上の投与ができるNK細胞の凍結保存を2006年から開始した。2011年まで最低13ヶ月以上保存した103例を対象とした。このうち本人の希望により保存期間中に1回以上投与した投与群は53例男31例、女22例、投与を希望しなかった非投与群は50例男25例、女25例であった。投与群は合計242回投与し、1人あたりの投与回数は、1回~57回で、中央値は3回であった。癌発症までの期間は保存開始から癌発症までの月数とした。投与群と非投与群のプロファイル両群全例のプロファイルである年齢図3及び保存期間図4には統計的有意差はなかった。投与群と非投与群はその母集団に差がないことから、両群の比較でNK細胞投与による癌発症抑制を統計的に示すことできることがわかった。投与群の癌発症抑制の効果の確認保存期間中に癌と診断されたのは、投与群で1例、非投与群で7例であった表2、図5及び図6。その保存期間を横軸にとった発症率曲線からログランク検定を行った図7。結果は両群の癌発症率に有意差を認め、その相対危険度は024で、投与することで癌発症が76抑制された。NK細胞投与による癌発症抑制と他の癌予防法との比較既報の癌予防法である、セレニウムBJUInt200391608、コーヒーNutrCancer20106221、緑茶AmJEpidemiol200816771、タモキシフェンLancet2003361296、ラロキシフェンJAMA19992812189、アスピリンJNatlCancerInst2009101256と本発明の癌発症抑制効果を示した表3、図8。本発明の癌発症抑制効果は、他と比べて優れた効果を示した。活性化NK細胞投与による抗体価上昇の確認健常人5名A~E由来の活性化NK細胞、さらにはHBワクチンを、それぞれ自身に1~3回投与して、抗体価の上昇を確認した。コントロールとして、健常者F~H由来のNK細胞を大量増殖していない活性化Tリンパ球、さらにはHBワクチンを、それぞれ自身に投与した、抗体価の上昇を確認した。なお、NK細胞を大量増殖していない活性化Tリンパ球の培養増殖方法は以下の通りである。活性化Tリンパ球の培養増殖方法以下の工程により、自己活性化Tリンパ球を得るため、末梢血リンパ球の培養増殖を行った。工程1リン酸緩衝液PBS20mlに対し、活性化T細胞の培養では、抗CD3抗体5μl/mlオルソクローンOKT3,ヤンセンファーマより入手の溶液を作成した。工程2工程1の溶液を、それぞれ別の225cm2のフラスコに分注し、4°Cで一晩静置させた。工程3工程2のフラスコをPBSで2回洗浄した。工程4健常人F~Hからヘパリン加末梢血30mlを採取し、FicollPaquePlusを媒体として用いた密度勾配遠心法により、末梢血単核球PBMCを分離した。工程5IL-2500単位/ml、Chiron社を含むNKGM培地コージンバイオ株式会社より入手に、工程4で分離したPBMCを0.5~1×106/mlの濃度で浮遊させ、さらに患者血漿2~10を加えて培養液とした。この段階で培養液は60~120mlになった。この培養液を、工程3の固相化抗体処理した培養フラスコに添加した。その後、5CO2培養器内37°Cの環境下で培養した。工程6培養開始から3~5日目に、多数のコロニーが作られ、芽球化blast化したことを確認したところで、培養液をさらに20~100追加し、IL-2を500単位/ml添加した。通常この時期は培養開始してから3日目であった。工程7工程6で培養液を追加してから対数増殖期に入った1~3日目に多くは1日目、活性化リンパ球を含んだ培養液を、NKGM-B1リットル入りバッグに注入した。通常、これを2~3バッグに分注した。分注後3~4日間隔で1バッグあたり、NKGM培地を100~300ml、及び、IL-2を10~20万単位、添加した。工程8培養開始14~21日目に、バッグから培養液を遠心管に移し、これを600Gで10分遠心した。遠心管からペレットを残して上清を吸引した後、ペレットにPBSを加え洗浄し、再び遠心操作をおこなった。この作業を2~3回繰り返し、培養リンパ球をよく洗浄した。最後に、ペレットを集め、生理的食塩水100mlに浮遊させ、これにヒト血清アルブミン2~4添加した。最後に、無菌テスト、エンドトキシンテストが陰性であることを確認した。培養活性化NK細胞若しくはT細胞投与並びにB型肝炎ワクチンの投与手順NK細胞投与群は、健常人5名A~Eに自身の培養活性化NK細胞を肘静脈から投与し、その3日後に遺伝子組み換えHBワクチン05mlビームゲン、化血研を筋注した。ワクチン投与4週後にHBs抗体価を調べた。この組み合わせで、1回目のあと6週後に2回目、6ヵ月後に3回目をおこなった。なお、AとCは1回の投与で終了した。なお、コントロールとして、Tリンパ球投与群は、健常人3名F~HにNK細胞を大量に含まない培養活性化Tリンパ球を各自に静脈注射し、さらにHBワクチンを自身に投与した。投与の間隔はNK投与群と同じである。NK細胞数の測定実施例1で得られたNK細胞を含む培養リンパ球生理的食塩水に浮遊させている及び上記生理的食塩水に浮遊させたリンパ球をエッペンドルフチューブに取り、これに所定の標識抗体を加え、定法により細胞を染色した。染色した細胞はただちにフローサイトメトリーで解析し、CD3-CD56NK細胞数を測定した。NK細胞数の測定結果実施例1で得られたNK細胞を含む培養リンパ球及び上記生理的食塩水に浮遊させたリンパ球中のNK細胞数の平均値を図9に示す。図9は各例の投与NK細胞数の平均値をプロットしたものである。投与NK細胞数は、NK細胞投与群A~Eでは平均4.8×109個であり、一方、Tリンパ球投与群F~Hでは平均0.5×109個であった。これにより、NK細胞投与群は、Tリンパ球投与群と比較して約10倍のNK細胞が投与された。HBs抗体価の測定方法上記投与前後の健常者A~Hから取得した血中のHBs抗体価を自体公知のCLIA法chemiluminescentimmunoassayを使用して測定した。この方法の正常値は100mIUml未満である。HBs抗体価の測定結果健常者A~Hから取得した血中のHBs抗体価を図10と図11に示す。5例中4例80:A,B,C,Dの4名において、有意に高い抗体価を誘導することができた参照:図10。一方、コントロールである活性化Tリンパ球投与NK細胞が1億個未満であるとB型肝炎ワクチンの投与では、抗体価の明らかな上昇は見られなかった参照:図11。以上により、NK細胞及びB型肝炎ワクチンを投与することにより、抗体価を上昇させることができた。特に、健常者A~Dは、抗体価が上昇しにくい60歳以上の男性であることも考慮すると、本発明は非常に優れた抗体価上昇効果を示した。総論上記実施例3の結果により、NK細胞、さらに肝炎ワクチンを患者に投与すれば、肝炎を治療することができると考えられる。"