複合出発材料から微生物を非特異的に蓄積するための方法であって、以下の方法工程を含む、上記方法:a微生物を含有する複合出発材料を先天性免疫系細胞と接触させる工程;b微生物と先天性免疫系細胞との間で結合複合体を形成する工程;c工程bからの結合複合体を、上記複合出発材料から取り出す工程。上記先天性免疫系細胞が哺乳類を起源とすることを特徴とする、請求項1に記載の方法。上記先天性免疫系細胞がヒト起源であることを特徴とする、請求項2に記載の方法。上記細胞が初代細胞であることを特徴とする、請求項1から3の何れか1項に記載の方法。上記初代細胞が骨髄細胞であることを特徴とする、請求項4に記載の方法。上記骨髄細胞がマクロファージであることを特徴とする、請求項5に記載の方法。上記細胞が細胞株の不死化細胞であることを特徴とする、請求項1から3の何れか1項に記載の方法。上記細胞株の不死化細胞が循環系に由来することを特徴とする、請求項7に記載の方法。上記細胞株の不死化細胞が、THP1、U937若しくはK562、又はそれらの混合物であることを特徴とする、請求項7に記載の方法。上記先天性免疫系細胞が代謝活性を示すことを特徴とする、請求項1から9の何れか1項に記載の方法。上記先天性免疫系細胞が固相に固定化されていることを特徴とする、請求項1から10の何れか1項に記載の方法。上記先天性免疫系細胞が細胞内に磁性粒子を含むことを特徴とする、請求項1から11の何れか1項に記載の方法。以下の実施例は、本発明をさらに説明することを意図するものであり、本発明を例示の実施形態に限定するものでは無い。以下のオリゴヌクレオチド配列又はプライマープローブ配列を用いた。BacSubProbe:56FAMGGAGGCGATCTATGTCTTGTCCABHQ1BacSubFWD:5ACATCTTACCGCAACTACGACCATBacSubREV:5TAGCATAGTCTTTGTCCCACCGTA実施例1:THP1細胞への種々な細菌の結合エシェリキアコリEscherichiacoli両者共にグラム陽性細菌を1mLのPBSに添加し各場合において109、バクテリアカウンティングキットインビトロジェン、米国、カールズバッドからの蛍光色素SYTOBCを用い、暗闇において室温で10分間回転させて染色した。その後、細菌を5分間、14000rpmで遠心分離して沈下させ、1mLのPBSで洗浄した。これらの蛍光標識された細菌を106個、107個又は108個それぞれの場合において2×105個のヒト単球細胞株THP1に添加し、37°Cで30分間攪拌しながらインキュベートした。5分間1000rpmで遠心分離した後、結合複合体をPBSで洗浄し、再遠心分離した後、フローサイトメーターで解析した。図1に示すように、上記3つの異なる微生物が、用いられた各異なる微生物量で同程度にTHP1細胞に結合したが、この事は、先天性免疫系細胞と微生物との間の相互作用が、包括的な相互作用であり、一種又は一グループの微生物に特異的に限定されるものでは無いことを説明している。実施例2:各種細胞株へのバチラスサブチルスの結合実施された手順は、実施例1に記載される通りであるが、今回は微生物としてバチラスサブチルスのみを使用し、当該微生物は105個及び107個の細菌量で用いた。実施例1に対して、実施例2で用いた先天性免疫系細胞は、単球細胞株THP1だけでなく、同様にヒト単球細胞株であるU937、並びにヒトB細胞株K562であった。図2には、THP1細胞及びU937細胞が、ほぼ同じ効率でバチラスサブチルスに結合したことが示されている。対照的に、K562細胞については効率が際立って低かった。105個のバチラスサブチルス量実線では、FACSにおいて、バチラスサブチルスが全く含まれていない対照塗潰し領域と比較して違いはほとんど無かった。それとは対照的に、107個のバチラスサブチルスを用いた場合、細胞株K562においてTHP1及びU937とほぼ同程度の効率が認められた。本実験により、細胞株THP1の細胞のみならず、先天性免疫系の更なる細胞種も、微生物に非特異的に結合出来ることが説明されている。実施例3:固定THP1細胞へのバチラスサブチルスの結合実施例1及び2では代謝活性を示すTHP1細胞を用いたのに対し、実施例3では、固定されているTHP1細胞を用いた。二つの異なる方法を固定のために用いた。最初の固定の手順では、2×105個のTHP1細胞を、室温で10分間、4パラホルムアルデヒドPFAにインキュベートし、第2の固定の手順では、インキュベーションは室温で10分間、100エタノール中で実施した。パラホルムアルデヒドは、タンパク質におけるアミノ酸残基を結合させるのに対し、エタノールは細胞の急速な脱水をもたらす。残りの実験を、微生物としてバチラスサブチルスを用いて実施例2に記載した通り実施した。図3には、代謝活性を示す先天性免疫系細胞のみならず、固定された細胞も微生物に結合し得ることが示されている。本実験では105個の微生物の検出は、代謝活性を依然として示す細胞で検出するよりも低い効率であったが、固定された先天性免疫系細胞を用いて、微生物が出発材料から蓄積された後では、FACSにおいて固定細胞を用いても105個の微生物を正確に検出することが可能である。実施例4:複合出発材料からの微生物の蓄積実施された手順は、基本的に実施例1に記載した通りであるが、本実験では106個及び108個のバチラスサブチルスを実験に導入し、それらを複合出発材料となる1.5の脂肪含量の全乳から取り出した。この目的のために、微生物を全乳25mLに添加し、その後、細菌を含む不溶性物質をペレット化するために5分間遠心分離した。続いて、ペレットをリン酸緩衝生理食塩水PBS25mL中に回収し、2×105個のTHP1細胞に添加した。インキュベーションは、室温、1時間又は3時間で回転させながら実施した。図4には、細菌が乳のような複合出発材料に比較的低濃度で存在する場合でも、本発明の方法を用いて細菌を蓄積及び検出し得ることが示されている。微生物を、1時間又は3時間、先天性免疫系細胞と接触させた場合、結果は同等であった。実施例5:RT-PCR検出を用いたバチラスサブチルスの蓄積102個、104個、106個又は108個のバチラスサブチルスを、10ウシ胎仔血清PAA、オーストリア、パスチングPaschingを含有する細胞培養培地RPMIインビトロジェン社中で2×105個のTHP1細胞と共にインキュベートした。結合していない微生物は、2μmのPCTEフィルタースエルリテック社、米国、ケントを介した濾過、或いはビオチン化CD14抗体及びビオチンバインダー磁性粒子インビトロジェン社を用いた免疫磁気分離の何れかによって、結合複合体から取出した。結合複合体からのゲノムDNAは、細菌ゲノムDNA用のキアアンプキットキアゲン社、ドイツ、ヒルデンを用いて単離した。単離したゲノムDNAは、THP1細胞及びバチラスサブチルスの両方の遺伝物質を含んでいた。この溶出液5μlを、続くRT-PCRに添加し、バチラスサブチルスのゲノムDNAのサブ領域を増幅した。RT-PCRの総量は、以下の更なる成分を有し、20μLであった:10μLのクオンチテクトマルチプレックスPCRミックスキアゲン社04μMのBacSubFWDプライマー04μMのBacSubREVプライマー02μMのBacSubProbeプローブ。反応混合物の残りは水で構成されていた。RT-PCRは、以下のプログラムを実行するABI7900HTにおいて384ウェルフォーマットで実施した。195°C15分2以下を40サイクル:94°C15秒55°C30秒72°C30秒用いた対照は、106個のバチラスサブチルス100対照及び2×105個のTHP10対照であった。図5には、本発明の方法を用いて微生物を蓄積した後、RT-PCR法を用いて微生物を検出かつ定量することも可能であることが示されている。出発材料から蓄積されたわずか10000個の微生物が検出され得る。