以下からなる群より選択されるR1タンパク質をコードする核酸分子ならびに該核酸分子のそれぞれの相補鎖およびコメにおいて天然に存在するR1遺伝子の介在配列:a配列番号:2に記載のアミノ酸配列を含むタンパク質をコードする核酸分子;b配列番号:1に記載のヌクレオチド配列のコード領域を含む核酸分子;cプラスミドDSM12439のcDNA挿入断片によってコードされるアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする核酸分子;dプラスミドDSM12439のcDNA挿入断片のコード領域を含む核酸分子;ea~dのいずれか1つに示される核酸分子の相補鎖とハイブリダイズする核酸分子;およびfその配列が遺伝子コードの縮重のためにeの核酸分子の配列とは異なる核酸分子。そのアミノ酸配列が配列番号:2に記載のアミノ酸配列と少なくとも60の相同性の程度を示し、以下からなる群より選択されるペプチドモチーフの少なくとも1つを含む、タンパク質をコードする請求項1記載の核酸分子:請求項1または2記載の核酸分子を含むベクター。核酸分子が真核細胞および原核細胞において転写を確実にする調節エレメントに結合している、請求項3記載のベクター。請求項1もしくは2記載の核酸分子、または請求項3もしくは4記載のベクターによって遺伝子改変されている宿主細胞。請求項1または2記載の核酸分子によってコードされるR1タンパク質の量が、対応する遺伝子改変されていない宿主細胞と比較して増加している、請求項5記載の宿主細胞。トランスジェニック植物細胞である、請求項5または6記載の宿主細胞。請求項7記載の植物細胞を含む植物。請求項1または2記載の核酸分子によってコードされるR1タンパク質をコードする請求項1または2記載のポリヌクレオチドを植物細胞に導入する段階、およびそれにより形質転換された細胞から植物を再生する段階を含む、請求項8記載の植物の生産方法。請求項8記載の植物からおよび/または該植物のデンプン貯蔵部分からデンプンを抽出する段階を含む、改変デンプンの生産方法。請求項7記載の植物細胞から、請求項8記載の植物から、または請求項10記載の方法によって得ることができるデンプン。請求項5または6記載の宿主細胞がタンパク質を発現させる条件下で培養され、該タンパク質が該細胞および/または培養培地から単離される、請求項1または2記載の核酸分子によってコードされるタンパク質の生産方法。請求項1もしくは2記載の核酸分子によってコードされる、または請求項12記載の方法によって得ることができるタンパク質。請求項13記載のタンパク質を特異的に認識する抗体。請求項1または2記載のDNA分子の転写物と相補的なアンチセンスRNAをコードするDNA分子。請求項1または2記載のDNA分子の転写物を特異的に切断するリボザイム活性を有するRNAをコードするDNA分子。植物細胞において発現すると、共抑制効果のために、請求項1または2記載の核酸分子の発現が減少する、RNAをコードするDNA分子。請求項15~17のいずれか一項記載のDNA分子を含むベクター。DNA分子が植物細胞において転写を確実にする調節DNAエレメントに結合している、請求項18記載のベクター。請求項15~17のいずれか一項記載のDNA分子または請求項18もしくは19記載のベクターを含む宿主細胞。異種核酸分子の存在または発現によって、請求項13記載のタンパク質をコードする内因性遺伝子の発現が阻害される、トランスジェニック植物細胞。異種核酸分子が以下からなる群より選択される、請求項21記載のトランスジェニック植物細胞:a請求項13記載のタンパク質をコードする内因性遺伝子の発現を減少させることができるアンチセンスRNAをコードするDNA分子;b共抑制効果によって、請求項13記載のタンパク質をコードする内因性遺伝子の発現を減少させることができるDNA分子;c請求項13記載のタンパク質をコードする内因性遺伝子の転写物を特異的に切断することができるリボザイムをコードするDNA分子;およびd変異または請求項13記載のタンパク質をコードする内因性遺伝子における異種配列の挿入を引き起こし、それによって、請求項13記載のタンパク質の発現の減少または不活性タンパク質の合成が起こる、インビボ変異誘発によって導入された核酸分子。請求項21または22記載の植物細胞を含むトランスジェニック植物。請求項15~17のいずれか一項記載のDNA分子の転写によって得ることができるRNA分子。内因性型として細胞において合成される請求項13記載のタンパク質の量が、細胞において減少していることを特徴とする、改変デンプンを合成するトランスジェニック植物細胞の生産方法。細胞における請求項13記載のタンパク質の量の減少がアンチセンス作用によって引き起こされることを特徴とする、請求項25記載の方法。細胞における請求項13記載のタンパク質の量の減少がリボザイムの作用によって引き起こされることを特徴とする、請求項25記載の方法。細胞における請求項13記載のタンパク質の量の減少が共抑制作用によって引き起こされることを特徴とする、請求項25記載の方法。細胞における請求項13記載のタンパク質の量の減少が、このタンパク質をコードする内因性遺伝子における変異によって引き起こされることを特徴とし、該変異がインビボ変異誘発によって導入される、請求項25記載の方法。請求項25~29のいずれか一項記載の方法によって得ることができる植物細胞。請求項30記載の植物細胞を含むトランスジェニック植物。請求項23もしくは31記載の植物からおよび/または該植物のデンプン貯蔵部分からデンプンを抽出する段階を含む、改変デンプンの生産方法。請求項21、22、もしくは30記載の植物細胞、もしくは請求項23もしくは31記載の植物から得ることができる、または請求項32記載の方法によって得ることができるデンプン。コメに由来することを特徴とする、請求項33記載のデンプン。請求項6または7記載の植物細胞を含む請求項8記載の植物の繁殖材料。請求項21もしくは22記載の植物細胞または請求項30記載の植物細胞を含む、請求項23または31記載の植物の繁殖材料。イネ科植物である、請求項23または31記載のトランスジェニック植物。請求項37記載のイネ科植物の種子。以下の実施例により本発明を説明する。実施例1R1酵素をコードするイネOryzasativaからのcDNAのクローニング8週齢のイネ科植物インディカ種IR36の緑色部分に由来する総RNAを、公表された手順に従って調製したロゲマンLogemannら、AnalBiochem1631987、21~26。製造元のマニュアルに従ってオリゴテックスmRNA精製キットキアゲン社を用いて、総RNA1mgを起源として用いてポリARNAを調製した。ポリARNA5μgを用いて、製造元のマニュアルに従ってZAPcDNA合成キットストラタジーン社cDNAライブラリを構築した。組換えファージにおけるcDNA挿入断片の大きさの平均値は13kbであった。プラークのリフティングは、ハイボンドNフィルターアマシャム社を用いて非増幅ライブラリの組換え型ファージ約2×105個について実施した。緩衝液A5×SSC、05BSA、5×デンハート、1SDS、40mMリン酸緩衝液、pH72、100mglニシン精子DNA、25ホルムアミドにおいて42°Cで4時間プレハイブリダイゼーションを行った後、フィルターをトウモロコシのR1cDNAの放射性標識ランダムプライムドDNA標識キット947bpEcoRIXhoI断片とハイブリダイズさせた国際公開公報第9827212号。42°Cで8時間ハイブリダイゼーションを行った後、3×SSC、05SDSを含む緩衝液においてフィルターを50°Cで20分間3回洗浄した。X線フィルムの暴露は通常通り14時間実施した。強くハイブリダイズしたファージプラークを再度スクリーニングして、精製した。プラスミドを製造元のマニュアルに従ってインビボ切除によって単離して、制限マッピングによって特徴付けを行った。DNA配列分析は最も長いcDNA挿入断片を含むプラスミドについて実施した。それらのプラスミドのうち、pOsR1と命名された一つは配列番号:2に示されるヌクレオチド配列情報を含んでいた。cDNAは、5末端部分が欠失している限りごく部分的である。しかし、失われている5末端は、5RACEcDNA末端の迅速な増幅法のような当技術分野で周知の方法によって単離することができる。この方法に従って、ポリメラーゼ連鎖反応を利用することによって、cDNAの欠失した5末端を増幅することが可能である。この方法は、クロンテック社のマラソンcDNA増幅キットを用いて実施してもよい。欠失した5末端をクローニングするその他の可能性としては、他のPCR反応、例えばλgt11コメcDNAライブラリクロンテック社、パロアルト、カリフォルニア州、アメリカを用いた他のPCR反応、免疫スクリーニングを実施すること、または例えばサムブルックSambrookらの分子クローニング、実験マニュアルMolecularCloningALaboratoryManual、第二版1989、コールドスプリングハーバー研究所出版、コールドスプリングハーバー、ニューヨーク州、に記述される標準的なハイブリダイゼーション方法を用いることが挙げられる。実施例2コメにおけるR1遺伝子の共抑制のための構築物実施例1に記載されたcDNAによってコードされるタンパク質の量が減少したイネ科植物を生産することを可能にするために、植物細胞において共抑制作用を得られるようにするプラスミドを構築した。このプラスミドは植物細胞の形質転換に用いることができ、以下の配列を含む:-CaMVの35SプロモーターオーデルOdellら、Nature3131985、180;-35S終結シグナルトプファーTopferら、NucleicAcidsRes151987、5890;-選択マーカーとしてのpat遺伝子;-ユビキチンプロモータートキTokiら、PlantPhysiol1001992、1503~1507;-ユビキチンイントロンクリステンセンChristensenら、PlantMolBiol181992、675~689;-実施例1に記載のcDNAを含むプラスミドpOsR1のSmaISnaBI断片4427bp;-nosターミネーターデピッカーDepickerら、JApplGenet11982、561~573;および-TDNA左右境界配列。pcoOsR1と命名したプラスミドの構造を図1に示す。このプラスミドは、例えばアグロバクテリウム媒介遺伝子移入によるまたは粒子衝突による、イネ科植物細胞の形質転換、および形質転換したイネ科植物の再生に用いられる。