"培養表面に複数のマイクロ容器を有する細胞培養容器であって、前記マイクロ容器の空間構造の高さが10μm~500μm、底部面積が100μm2~1mm2の空間から構成される培養表面を有する細胞培養容器を用いて、多能性哺乳細胞を培養し、少なくとも部分的に内胚葉系列の細胞に分化した細胞集団を得る多能性哺乳細胞を分化させる培養方法。前記多能性哺乳細胞は、胚性幹細胞ES細胞、誘導多能性幹細胞iPS細胞、奇形癌腫細胞精子幹細胞のいずれかから選択されることを特徴とする請求項1記載の多能性哺乳細胞を分化させる培養方法。前記多能性哺乳細胞を、1つの前記マイクロ容器に1個~3×105個播種して前記細胞集団を得ることを特徴とする請求項1または2記載の多能性哺乳細胞を分化させる培養方法。前記多能性哺乳細胞を、TGF-βファミリー、FGFファミリー、及びPI3-キナーゼシグナル伝達経路阻害剤からなる群から選択される1種類の物質または2種類以上の混合物を含む培地で培養して前記細胞集団を得ることを特徴とすることを特徴とする請求項1乃至3のいずれか一項に記載の多能性哺乳細胞を分化させる培養方法。前記TGF-βファミリーのメンバーは、Nodal、ActivinA、ActivinB、TGF-β、BMP2、及びBMP4からなる群から選択される1種類の物質または2種類以上の混合物であることを特徴とする請求項4の多能性哺乳細胞を分化させる培養方法。前記FGFファミリーのメンバーは、b-FGF、FGF-4、FGF-2からなる群から選択される1種類の物質または2種類以上の混合物であることを特徴とする請求項4または5の多能性哺乳細胞を分化させる培養方法。前記PI3-キナーゼシグナル伝達経路阻害剤は、LY294002、ラパマイシン、wortmannin、塩化リチウム、Akt阻害剤I、Akt阻害剤II、Akt阻害剤III、NL-71-101からなる群から選択される1種類の物質または2種類以上の混合物であることを特徴とする請求項4乃至6のいずれか一項に記載の多能性哺乳細胞を分化させる培養方法。少なくとも部分的にSOX17を発現しておりAFPを発現していない細胞集団を得ることを特徴とする請求項1乃至7のいずれか一項に記載の多能性哺乳細胞を分化させる培養方法。少なくとも部分的にSOX17を発現しておりPdx-1を発現していない細胞集団を得ることを特徴とする請求項1乃至7のいずれか一項に記載の多能性哺乳細胞を分化させる培養方法。少なくとも部分的にFoxA1またはFoxA2を発現しておりAFPを発現していない細胞集団を得ることを特徴とする請求項1乃至7のいずれか一項に記載の多能性哺乳細胞を分化させる培養方法。少なくとも部分的にFoxA1またはFoxA2を発現しておりPdx-1を発現していない細胞集団を得ることを特徴とする請求項1乃至7のいずれか一項に記載の多能性哺乳細胞を分化させる培養方法。請求項1乃至11のいずれか一項に記載の内胚葉系列の細胞に分化した細胞集団を、FGF、BMP2、HGF、KGF、EGF、TGF-α、HB-EGF、VEGF、PDGF、DMSO、デキサメタゾン、oncostatinM、及びインスリンからなる群から選択される、1種類または2種類以上の物質を含む培地で培養し、少なくとも、アルブミンALBと、アルファフェトプロテインAFPとのいずれかを発現する細胞が部分的に存在する第2細胞集団を得ることを特徴とする多能性哺乳細胞を分化させる培養方法。酸素濃度が4以下の大気中で培養することを特徴とする請求項1乃至12のいずれか一項に記載の多能性哺乳細胞を分化させる培養方法。前記細胞培養容器は、アクリル系樹脂、ポリ乳酸、ポリグリコール酸、スチレン系樹脂、アクリルスチレン系共重合樹脂、ポリカーボネート樹脂、ポリエステル系樹脂、ポリビニルアルコール系樹脂、エチレンビニルアルコール系共重合樹脂、熱可塑性エラストマー、塩化ビニル系樹脂、及びシリコン樹脂のうち1つまたはそれ以上の組み合わせからなる、樹脂成型品である、請求項1乃至13のいずれか一項に記載の多能性哺乳細胞を分化させる培養方法。前記マイクロ容器は、前記マイクロ容器の空間構造の高さ方向に形成された側壁の上部50以上の部分において、前記底部と該側壁の各側面がなす角度が80°~90°であることを特徴とする請求項1乃至14のいずれか一項に記載の多能性哺乳細胞を分化させる培養方法。前記マイクロ容器底部の長径が短径の1~1.5倍の範囲内であることを特徴とする請求項1乃至15のいずれか一項に記載の多能性哺乳細胞を分化させる培養方法。前記マイクロ容器が設けられた領域に、表面処理が行われていることを特徴とする請求項1乃至16のいずれか一項に記載の多能性哺乳細胞を分化させる培養方法。前記表面処理が無機物でコートされたものであることを特徴とする請求項17記載の多能性哺乳細胞を分化させる培養方法。前記表面処理がコラーゲン、ラミニンなどの細胞外マトリクスでコートされたものであることを特徴とする請求項17または18記載の多能性哺乳細胞を分化させる培養方法。前記表面処理が合成物質でコートされたものであることを特徴とする請求項17乃至19のいずれか一項に記載の多能性哺乳細胞を分化させる培養方法。前記表面処理がプラズマ処理でコートされたものであることを特徴とする請求項17乃至20のいずれか一項に記載の多能性哺乳細胞を分化させる培養方法。前記表面処理が前記マイクロ容器底面に、細胞接着斑に相当する直径である1nmから、細胞1個に相当する直径である20μmの大きさの凹凸を有するものであることを特徴とする請求項17乃至21のいずれか一項に記載の多能性哺乳細胞を分化させる培養方法。しかしながら、非特許文献に開示された培養方法では、操作が煩雑で高コストという問題があった。また、培養期間中に、細胞非接着部分に一部細胞が接着することもあり、高効率に細胞を分化させるには問題が残っている。これは、胚葉体の凝集塊のサイズの制御を困難にしている。そこで本発明は、表面に複数のマイクロ容器を有する細胞培養容器であって、当該マイクロ容器の底部面積が100μm2~1mm2であり、深さが10~500μmの空間から構成される培養表面を有する細胞培養容器を用いて、胚葉体サイズの制御を実現し、胚葉体サイズを制御した状態で分化誘導可能な方法を提供することを目的とする。本発明に係る多能性哺乳細胞を分化させる培養方法の一態様は、培養表面に複数のマイクロ容器を有する細胞培養容器を用いる。細胞培養容器は、マイクロ容器の空間構造の高さが10μm~500μm、底部面積が100μm2~1mm2の空間から構成される培養表面を有する。多能性哺乳細胞を分化させる培養方法は、この細胞培養容器を用いて、多能性哺乳細胞を培養し、少なくとも部分的に内胚葉系列の細胞に分化した細胞集団を得る。当該マイクロ容器を用い、培養する胚葉体サイズを制御する。そして、胚葉体サイズを制御した状態を用いて、細胞の分化を誘導する。これにより、多能性哺乳細胞を分化させる効率を改善する。また、本発明に係る多能性哺乳細胞を分化させる培養方法の一態様において、多能性哺乳細胞は、胚性幹細胞ES細胞、誘導多能性幹細胞iPS細胞、奇形癌腫細胞精子幹細胞のいずれかから選択されることが好ましい。多能性哺乳細胞を、1つのマイクロ容器に1個~3×105個播種し、培養して前記細胞集団を得ることが好ましい。本発明に係る多能性哺乳細胞を分化させる培養方法の一態様において、多能性哺乳細胞を、TGF-βファミリー、FGFファミリー、及びPI3-キナーゼシグナル伝達経路阻害剤からなる群から選択される1種類の物質または2種類以上の混合物を含む培地で培養することが好ましい。上述したTGF-βファミリーのメンバーは、Nodal、ActivinA、ActivinB、TGF-β、BMP2、及びBMP4からなる群から選択される1種類の物質または2種類以上の混合物であることが好ましい。上述したFGFファミリーのメンバーは、b-FGF、FGF-4、FGF-2からなる群から選択される1種類の物質または2種類以上の混合物であることが好ましい。上述したPI3-キナーゼシグナル伝達経路阻害剤は、LY294002、ラパマイシン、wortmannin、塩化リチウム、Akt阻害剤I、Akt阻害剤II、Akt阻害剤III、NL-71-101からなる群から選択される1種類の物質または2種類以上の混合物であることが好ましい。また、本発明に係る多能性哺乳細胞を分化させる培養方法の一態様において、1少なくとも部分的にSOX17を発現しておりAFPを発現していない細胞集団を得ること、2少なくとも部分的にSOX17を発現しておりPdx-1を発現していない細胞集団を得ること、3少なくとも部分的にFoxA1またはFoxA2を発現しておりAFPを発現していない細胞集団を得ること、4少なくとも部分的にFoxA1またはFoxA2を発現しておりPdx-1を発現していない細胞集団を得ること、のいずれかであることを特徴とする。さらに、本発明に係る多能性哺乳細胞を分化させる培養方法の一態様において、上述した培養方法によって得られた内胚葉系列の細胞に分化した細胞集団を、FGF、BMP2、HGF、KGF、EGF、TGF-α、HB-EGF、VEGF、PDGF、DMSO、デキサメタゾン、oncostatinM、インスリンからなる群から選択される、1種類または2種類以上の物質を含む培地で培養する。そして、少なくとも、アルブミンALBと、アルファフェトプロテインAFPとのいずれかを発現する細胞が部分的に存在する第2の細胞集団を得る。本発明に係る多能性哺乳細胞を分化させる培養方法の一態様において、酸素濃度が4以下の大気中で培養することが好ましい。上述した細胞培養容器は、アクリル系樹脂、ポリ乳酸、ポリグリコール酸、スチレン系樹脂、アクリルスチレン系共重合樹脂、ポリカーボネート樹脂、ポリエステル系樹脂、ポリビニルアルコール系樹脂、エチレンビニルアルコール系共重合樹脂、熱可塑性エラストマー、塩化ビニル系樹脂、及びシリコン樹脂のうち1つまたはそれ以上の組み合わせからなる、樹脂成型品であることが好ましい。上述したマイクロ容器は、前記マイクロ容器の空間構造の高さ方向に形成された側壁の上部50以上の部分において、前記底部と該側壁の各側面がなす角度が80°~90°であることが好ましい。上述したマイクロ容器底部の長径が短径の1~1.5倍の範囲内であることが好ましい。上述したマイクロ容器が設けられた領域に、表面処理が行われていることが好ましい。また、表面処理は、無機物でコートされたものであること、コラーゲン、ラミニンなどの細胞外マトリクスでコートされたものであること、合成物質でコートされたものであること、プラズマ処理でコートされたものであること、マイクロ容器底面に、細胞接着斑に相当する直径である1nmから細胞1個に相当する直径である20μmの凹凸を有するものであること、のいずれかであることが好ましい。表面に複数のマイクロ容器を有する細胞培養容器であって、当該マイクロ容器の底部面積が100μm2~1mm2であり、深さが10~500μmの空間から構成される培養表面を有する細胞培養容器を用いて、胚葉体サイズの制御を実現し、胚葉体サイズを制御した状態で分化誘導可能な、多能性哺乳細胞を分化させる培養方法を提供する。以下、図面を参照して本発明の実施の形態について説明する。ただし、本発明が以下の実施の形態に限定される訳ではない。説明の明確化のため、以下の記載及び図面は、適宜、省略、及び簡略化がなされている。各図面において同一の構成または機能を有する構成要素および相当部分には、同一の符号を付し、その説明は省略する。実施の形態まず、実施の形態に係る細胞培養容器について説明し、その後、細胞培養方法について説明する。1.細胞培養容器図1は、本実施の形態に係る細胞培養容器の構成を示す平面図であり、図2は図1のII-II断面図である。図1に示すように、細胞培養容器10はマイクロ容器11、側壁12を備える。細胞培養容器10の培養面には、複数の側壁12が網目状に形成されており、この側壁12に四方を囲われた空間マイクロ空間がマイクロ容器11となる。図1において、マイクロ容器11の底部の幅a、マイクロ容器11を区画するための側壁12の幅b、高さcを示した。本発明における底部面積とは、マイクロ容器開口水平面側壁12上面と同一面に垂直方向に上方から容器底へ平行光を照射した際の投影面積のことをいい、その面積は、100μm2~1mm2である。例えば、マイクロ容器の底がU字形状である場合、その開口面に垂直方向な上方より底に入射した平行光が投影する形状が底部面積となる。投影底部の長径及び短径とは、円及び楕円の場合、その重心を通る長軸及び短軸と円周との交点の各軸上の距離を長径及び短径といい、多角形の場合、その多角形の面積との差が最小となり各頂点を通る外挿円又は外挿楕円の長径および短径をいい、各頂点を通る外挿円又は外挿楕円を描けない場合は、最も多くの頂点を通る近似円又は楕円の長径および短径をいう。底部の大きさを、幅と奥行きとを用いて表す場合、幅と奥行きとは、底部上において垂直関係となる。マイクロ容器11の底部形状は特に制限されるものではなく、正方形、円、多角形以外にも種々の形状を採用することができる。生体内での肝機能を再現する細胞培養には、この底部面積は0.01mm2~0.1mm2が好ましい。また、底部の長径が短径の1~1.5倍であることが好ましい。さらに、等方的形状が好ましく、正方形であれば、例えば、相当直径100μmの胚葉体の凝集塊を形成させる場合、一辺の長さが100μm~300μmが好ましい。また、例えば相当直径500μmの胚葉体の凝集塊を形成させる場合、一辺の長さが500μm~800μmが好ましい。マイクロ容器11の水平面と側壁12とがなす角度は、細胞が乗り上げない角度でなければならないため、側面の上部から50以上の部分は80°~90°が好ましく、特に、85°~90°であることが好ましい。側壁12の高さcは、マイクロ容器11で培養する細胞が乗り上げ隣接するマイクロ容器11へ移動しなければよく、10μm~500μmが好ましい。例えば、側壁12の高さcは、相当直径100μmの胚葉体の凝集塊を形成させる場合、50μm~150μmが好ましい。また、例えば相当直径500μmの胚葉体の凝集塊を形成させる場合、50μm~300μmが好ましい。図3は、図1の細胞培養容器を用いて細胞を培養する状態を示す模式図である。図3では、細胞培養容器を側面から透視してみた図である。任意のシャーレもしくはウェルプレート7に細胞培養容器10を設置し、培地8で細胞培養容器10を満たす。側壁12に囲まれて形成されたマイクロ容器11内で、細胞9が培養される。図3中、図1,2と同様に、マイクロ容器11の底部の幅a、側壁12の幅b、高さcを示す。培養表面は、マイクロ容器11の底部と側壁12とによって形成される空間の表面である。細胞9は、培養表面を用いて培養される。なお、図4及び図5に示すように、各マイクロ容器11の四辺に形成された側壁12の各辺の中央部に、開口部13が形成されていてもよい。隣接するマイクロ容器11を互いに連通するための開口部13の幅dは、培養細胞が最初に播種されたマイクロ容器11から隣接するマイクロ容器11に移動できない程度であればよい。例えば、培養細胞の相当直径が20μmであれば、5~15μmであることが好ましい。ここで、図4は、本実施の形態に係る他の細胞培養容器の構成を示す平面図であり、図5は図4のV-V断面図である。また、図6及び図7に示すように、本実施の形態に係る細胞培養容器は、所定数の複数のマイクロ容器からなる区画されたスポットを有していてもよい。ここで、図6は、本実施の形態に係るさらに他の細胞培養部の構成を示す平面図であり、図7は図6のVII-VII断面図である。図6及び図7では、図4及び図5に示すマイクロ容器の構造を用いている例を示す。図6には、複数のマイクロ容器を区画化する側壁24とその区画化されたスポット23を示した。側壁24の高さeは、培養液や反応液等の上清液が乾燥せず保持できる容量であればよく、適宜設定すればよい。側壁24を有することにより、各スポット23で異なる培地を用いることも可能となる。また、図6及び図7において、側壁24を有する構成例を示したが、側壁24を備えていない構成であってもよい。細胞培養容器上の凹凸パターンを作製する方法としては、特に限定されないが、例えば、モールドを用いた転写成形、3次元光造形、精密機械切削、ウェットエッチング、ドライエッチング、レーザ加工、放電加工等の方法が挙げられる。細胞培養容器の用途、要求される加工精度、コスト等を考慮してこれらの製造方法を適宜選択することが好ましい。モールドを用いて転写成形する方法の具体例としては、金属構造体を型として樹脂成形で凹凸パターンを形成する方法が挙げられる。この方法は金属構造体の形状を高い転写率で樹脂へ凹凸パターンに再現することが可能であり、また汎用の樹脂材料を使用することにより材料コストを低くできるので好ましい。このような金属構造体の型を用いる方法は、低コストであり、高い寸法精度を満足できる点で優れている。上記金属構造体の製造方法としては、例えば、フォトリソグラフィによって作製されたレジストパターンや3次元光造形によって作製された樹脂パターンへのメッキ処理、精密機械切削、ウェットエッチング、ドライエッチング、レーザ加工、放電加工等が挙げられる。用途、要求される加工精度、コスト等を考慮して適宜選択すればよい。上記で得られた金属構造体を型として用いて樹脂へ凹凸パターンを成形する方法としては、例えば、射出成形、プレス成形、モノマーキャスト成形、溶剤キャスト成形、ホットエンボス成形、押出成形によるロール転写等の方法を挙げることができる。生産性及び型転写性の観点から射出成形を採用することが好ましい。細胞培養容器を構成する材料としては、自己支持性を有するものであれば特に制限されず、例えば、合成樹脂、シリコン、ガラス等が挙げられる。コスト面や顕微鏡観察による細胞視認性の観点から、透明な合成樹脂を材料とすることが好ましい。透明な合成樹脂としては、例えば、ポリメタクリル酸メチル、メタクリル酸メチル-スチレン共重合体、等のアクリル系樹脂、ポリスチレン、アクリルスチレン系共重合樹脂等のスチレン系樹脂、シクロオレフィン等のオレフィン系樹脂、ポリエチレンテレフタレート、ポリ乳酸、ポリグリコール酸等のエステル系樹脂、ポリジメチルシロキサン等のシリコーン系樹脂、ポリカーボネート樹脂、ポリエステル系樹脂、ポリビニルアルコール系樹脂、エチレンビニルアルコール系共重合樹脂、熱可塑性エラストマー、塩化ビニル系樹脂、シリコン樹脂等が挙げられる。このような樹脂には、透明性を損なわない範囲で着色剤、拡散剤、増粘剤等の各種添加剤を含んでいてもよい。細胞培養容器は、容器表面の親水性、生体適合性、細胞親和性等を向上させることを目的として、凹凸パターン表面側に表面処理を行い、改質層及び/又はコーティング層が配されていてもよい。上記改質層を設ける方法としては、自己支持性を失う方法や100μm以上の極端な表面荒れを起こす方法でなければ特に制限はないが、例えば、薬品処理、溶剤処理、表面グラフト重合によるグラフトポリマーの導入等の化学的処理、コロナ放電、オゾン処理、プラズマ処理等の物理的処理等の方法が挙げられる。またコーティング層を設ける方法としては、特に制限されるものではないが、例えば、スパッタ、蒸着等のドライコーティング、無機材料コーティング、ポリマーコーティング等のウェットコーティング等の方法が挙げられる。凹凸パターン上には、気泡の混入することなく培養液を注入するために親水性を付与することが望ましく、均一な親水性膜を形成させる方法として、無機蒸着が好ましい。また、細胞親和性を考慮した場合には、例えば、コラーゲン、フィブロネクチン、ラミニン等の細胞親和性タンパク質をコーティングすることがより好ましい。コラーゲン水溶液等を均一にコートするために、上述の親水性膜を形成させた後、コートすることが好ましい。生体内環境を模倣して細胞外マトリックス表面での培養が望ましいため、上記のように均一な親水性無機膜を配した後に、培養細胞に適した細胞外マトリックスからなる有機膜を配することが特に好ましい。また、マイクロ容器底面に、細胞接着斑~培養細胞に相当する大きさに相当する1nm~20μmの凹凸を形成させる方法が挙げられる。このような表面に、上記に記載の親水性処理、細胞親和性たんぱく質をコートする方法と組み合わせる方法が好ましい。上記の各表面処理はそれぞれ単独で行っても良いし、必要に応じて適宜組み合わせて行ってもよい。また、上述した細胞培養容器を用いる細胞培養方法は、細胞を培養するマイクロ容器のみに細胞を配置させ、その空間内で生体内に類似した形態や機能を発現させるため、適切な細胞数を播種する必要があり、細胞播種密度1.0×102~1.0×106細胞/cm2が好ましく、細胞播種密度1.0×103~1.0×105細胞/cm2がより好ましい。例えば、マイクロ容器が正方形で、1辺が100μmの場合、5.0×103~5.0×105細胞/cm2が好ましい。用いられる多能性哺乳細胞は、一般的な平坦な培養表面をもつ培養プレート、または、培養ディッシュを用いて増殖させた細胞を用いてもよく、また、上述した細胞培養容器を用いて増殖させてもよい。また、上述した細胞増殖は一般的にフィーダ細胞を用いられるが、他の細胞の混入を防ぐため、及び操作を簡便にするため、フィーダ細胞を用いないほうがより好ましい。上述した細胞培養容器を用いる細胞培養方法は、胚葉体の凝集塊を形成させる工程を含むが、その際、フィーダ細胞を用いてもよいが、他の細胞の混入を防ぐ、及び操作を簡便にする観点から、フィーダ細胞を用いないほうがより好ましい。2.細胞培養方法本実施形態では、多能性哺乳細胞を培養し、少なくとも部分的に内胚葉系列EndodermLineagesの細胞に分化した細胞集団を得る培養方法を説明する。本明細書では、細胞培養方法を説明するにあたって、次の用語を用いる。用語多能性は、胚の構造を支える細胞以外の、あらゆる型の細胞を生じさせる細胞の能力を指す。用語多能性細胞は、外胚葉、内胚葉、および中胚葉細胞の1つに少なくとも発達することができる細胞を指す。用語全能性細胞は、全系列の細胞に発達することができる細胞を指す。用語胚性幹細胞ES細胞は、万能細胞の一種であり、さまざまな異なる細胞に分化し、増殖する能力を持つ、発生初期の胚由来の細胞である。ES細胞は、受精卵の一段階である胚盤胞から取り出した内部細胞塊から樹立される。用語誘導多能性幹細胞iPS細胞は、万能細胞の一種であり、ES細胞と同様に増殖して各種細胞へと分化することが可能な細胞である。iPS細胞は皮膚細胞などから作り出すことができる。用語多分化能性は、終末分化していない細胞を指す。同様に、用語多分化能性は、操作すなわち、核移植または脱分化誘導なしには、3つ全ての胚葉中胚葉、外胚葉および内胚葉由来の分化した細胞型を形成できない細胞、また言い換えると部分的に分化した細胞を指す。用語多能性ヒト細胞は、ヒト胚、胎児または成体組織から得られた多能性細胞を包含する。多能性ヒト細胞は、ES細胞、iPS細胞、ヒト内部細胞塊ICM/胚盤葉上層細胞、初期原始外胚葉細胞EPLなどのヒト原始外胚葉細胞、ヒト始原生殖EG細胞、およびヒト奇形癌腫EC細胞からなる群から選択することができる。用語内胚葉には、胚体内胚葉、壁側内胚葉、臓側内胚葉、および中内胚葉細胞が含まれるが、それに限定されるわけではない。本明細書に使用されるように、用語胚体内胚葉は胚において内胚葉系列から生成する任意または多数の内胚葉細胞型すなわち膵臓、肝臓、肺、胃、腸および甲状腺に分化する能力を有する初期内胚葉細胞を指す。胚体内胚葉細胞は多分化能である。したがって、本発明の関連で用語胚体内胚葉の使用は、その細胞が、得られた多能性細胞よりも内胚葉細胞型に向けて少なくともより大きく分化していることを意味する。同様に、本明細書に使用されるように、内胚葉細胞の産生は、内胚葉細胞が集積した細胞培養物の産生を包含する。胚体内胚葉細胞は、SOX17などの特異的マーカ転写体の発現と、それに付随したAFPおよびトロンボモジュリンに関するマーカ転写体の不在とによって特徴付けられる。なお、当該細胞はMIX1、GATA4、HNFα、およびHNF3bを発現することがある。原腸形成と名付けられたヒト発生初期の重大な段階は、受精の2~3週間後に起こる。原腸形成の間に、胚体内胚葉形成過程は、中内胚葉細胞中胚葉または内胚葉形成に適格な細胞が原始線条と呼ばれる構造を通過して遊走する細胞遊走イベントと共に開始する。胚体内胚葉は、線条前部および結節線条最前部での特殊構造を通過して遊走する細胞に由来する。遊走が起こるとき、胚体内胚葉は最前部腸管を最初占有し、腸管後端の形成と共に最高に達する。用語分化するは、それが得られた細胞型よりもよく分化した細胞型の産生を指す。したがって、本用語は部分的に分化および終末分化した細胞型を包含する。細胞、細胞系、細胞培養物または細胞集団を指す場合、用語単離されたは、その細胞、細胞系、細胞培養物、または細胞集団がinvitro培養できるように、その細胞の天然供給源から実質的に分離されたことを指す。さらに、用語単離することは、2つ以上の細胞の群から1つまたは複数の細胞を物理的に選択することを指し、ここで、これらの細胞は、細胞の形態および/または様々なマーカの発現に基づき選択される。用語発現するは、細胞中のポリヌクレオチドの転写またはポリペプチドの翻訳を指し、それによって、その分子を発現しない細胞中のその分子のレベルよりも、その分子を発現する細胞中のその分子のレベルの方が測定できる程度に高い。分子の発現を測定する方法は当業者に十分に公知であり、それらの方法には、非限定的にノーザンブロット、RT-PCR、insituハイブリダイゼーション、ウエスタンブロット、および免疫染色が含まれる。用語接着培養は、細胞を固体表面上で培養し、その固体表面を今度は固体支持体で被覆することができ、今度は下記に挙げたもののような別の支持体の表面被覆で、または細胞を培養物中で増殖または安定化させる任意の他の化学材料または生物学的材料でその支持体を被覆することができる細胞培養系を指す。これらの細胞は固体表面または支持体に堅固に接着できるか、またはできない。用語Sox17は内胚葉系列の細胞を示すマーカである。これは、DNA結合ドメインを含む転写制御因子で、幹細胞の運命決定に深く関わっている、Sryrelatedhighmobilitygroupboxファミリーの一つであり、内胚葉の形成と維持に必要であることが知られている。参考文献:HudsonCClementsDFridayRVStottDandWoodlandHRXsox17alphaandbetamediateendodermformationinXenopusCell91397405用語FoxA1、FoxA2は、HumanForkheadbox遺伝子ファミリーのひとつであり、膵臓の細胞、肝細胞に分化する前段階で発現するといわれている。すなわち、これら遺伝子が発現している細胞は、内胚葉系列の細胞と成熟した組織細胞の中間の細胞と定義づけられる。用語Pdx-1は、膵臓細胞に発現する遺伝子で、膵臓細胞のマーカであることが知られている。用語AFPは、肝細胞に発現する遺伝子で、肝細胞のマーカであることが知られている。[実施例1]1.マウスiPS細胞の調整工程マイクロ容器の高さが50μm、幅が100μm、奥行きが100μmの空間が培養底面に規則的に配置された細胞培養容器を用い、0.5×105個/cm2になるように、マウスiPS細胞を播種し、18FBS,2mercaptoethanol110mM,及び、500U/mlleukemiainhibitoryfactorを含むDMEMGIBCO社製培地で3日間培養した。培地交換は1回/24時間の頻度で行った。2.胚葉体の凝集塊作製工程EB培養15FBS,1nonessentialaminoacids,1nucleosides,1penicillinstreptomycin,及び、1glutamicacidを含むDMEM-F12GIBCO社製培地に交換して2日間培養した。培地交換は1回/1日の頻度で行った。3.内胚葉系列の細胞の作製工程1FBS,1nonessentialaminoacids,1nucleosides,1penicillinstreptomycin,1glutamicacid,3BSA,100ng/mlFGF-2、及び、100ng/mlActivin-Aを含むDMEM-F12GIBCO社製培地に交換して3日間培養した。培地交換は1回/12時間の頻度で行った。4.AFP、ALB陽性細胞の作製工程10-15FBS,1nonessentialaminoacid,1nucleosides,1penicillinstreptomycin,1glutamic,50ng/mlHGF、及び、1DMSOを含むDMEM-F12培地に交換して、8日間培養した。培地交換は1回/12時間の頻度で行った。さらに、10-15FBS,1nonessentialaminoacid,1penicillinstreptomycin,1glutamicacid,100ng/mldHGF、及び、10-7Mdexamethasoneを含むDMEM-F12培地で、3日間培養した。培地交換は1回/12時間の頻度で行った。[比較例1]0.フィーダ細胞の調整工程φ6cmのプラスチック製の培養底面が平坦な細胞培養ディッシュに、フィーダ細胞Primarymouseembryofibroblasts大日本製薬社P-MEF-CFを、10FBS,4500mg/Lglucose,2mMLglutamine,1penicillinstreptomycinを含むDMEM培地で8時間培養した。1.マウスiPS細胞の調整2工程1.1細胞播種工程上記0の工程で得られた培養ディッシュに、0.5×105個/cm2になるように、マウスiPS細胞を播種し、18FBS,2mercaptoethanol110mM、及び、500U/mlleukemiainhibitoryfactorを含むDMEMGIBCO社製培地で3日間培養した。培地交換は1回/24時間の頻度で行った。1.2細胞回収工程1.1の培地を取り除き、PBSで洗浄した後、0.25トリプシン/EDTA溶液を用いて、フィーダ細胞上からiPS細胞を剥離した。2.胚葉体の凝集塊作製工程EB培養φ6cmのプラスチック製の培養底面が平坦な培養ディッシュに、1.2で得られた細胞を播種した。培地は、15FBS,1nonessentialaminoacids,1nucleosides,1penicillinstreptomycin,1glutamicacidを含むDMEM-F12GIBCO社製培地を用いて2日間培養した。培地交換は1回/1日の頻度で行った。3.内胚葉系列の細胞の作製工程1FBS,1nonessentialaminoacids,1nucleosides,1penicillinstreptomycin,1glutamicacid,3BSA,100ng/mlFGF-2、及び、100ng/mlActivin-Aを含むDMEM-F12GIBCO社製培地に交換して3日間培養した。培地交換は1回/12時間の頻度で行った。4.AFP、ALB陽性細胞の作製工程1015FBS,1nonessentialaminoacid,1nucleosides,1penicillinstreptomycin,1glutamicacid,50ng/mlHGF、及び、1DMSOを含むDMEM-F12培地に交換して、8日間培養した。培地交換は1回/12時間の頻度で行った。さらに、10-15FBS,1nonessentialaminoacid,1penicillinstreptomycin,1glutamicacid,100ng/mldHGF、及び、10-7Mdexamethasoneを含むDMEM-F12培地に交換して、3日間培養した。培地交換は1回/12時間の頻度で行った。[分析]分析は、リアルタイムPCR法で行い、上記1の工程に使用する前のiPS細胞と、上記4の培養工程が終了した後の細胞を回収して、AFP、ALB、GAPDHのmRNAの定量解析を行った。ALBとAFPのmRNA発現量はGAPDHに対する値として算出した。[結果]上記1の工程に使用する前のiPS細胞の各遺伝子発現量を1とした場合の相対値を示す。実施例1にある方法で内胚葉系列の細胞に分化させた後、肝細胞に分化させることで、肝特異的なマーカであるAFPとALBの遺伝子発現量が、比較例に対して、それぞれ1.7倍、33倍と高い値となった。[実施例2]マイクロ容器をもつ培養プレートを用いたヒトiPS細胞の分化誘導0.フィーダ細胞の調整工程φ6cmのプラスチック製の培養底面が平坦な細胞培養ディッシュに、フィーダ細胞Primarymouseembryofibroblastsを、10FBS,4500mg/Lglucose,2mMLglutamine,1penicillinstreptomycinを含むDMEM培地で8時間培養した。1.ヒトiPS細胞の調整工程ヒトiPS細胞株201B7理研BRC番号:HPS0001はマウス線維芽細胞MEF上でDMEM/F1220KSRbFGFを含む培地を用いて維持した。2.胚性内胚葉細胞の作製工程マトリゲルをコートした、マイクロ容器の高さが50μm、幅が100μm、奥行きが100μmの空間が培養底面に規則的に配置された細胞培養容器に、単細胞に分散したヒトiPS細胞を播種し、RPMI1640にB27を添加した分化誘導培地を用いて24時間培養した。24時間後に、ヒト型アクチビンを分化誘導培地に添加した培地に交換し、6日間培養した。培地交換は1回/2日の頻度で行った。3.肝細胞系列の細胞の作製工程AFP、HNF4A陽性細胞の作製工程実施例2に記載の2.胚性内胚葉細胞の作製工程の操作を行なった後、分化誘導培地に10ngbFGF、20ng/mlhBMP4を添加した培地に交換し、3日間培養した。培地交換は1回/2日の頻度で行なった。次に、分化誘導培地に40nghHGFを含む培地に交換し、さらに4日間培養した。培地交換は1回/2日の頻度で行なった。[比較例2]平板の培養プレートを用いたヒトiPS細胞の分化誘導0.フィーダ細胞の調整工程φ6cmのプラスチック製の培養底面が平坦な細胞培養ディッシュに、フィーダ細胞Primarymouseembryofibroblastsを、10FBS,4500mg/Lglucose,2mMLglutamine,1penicillinstreptomycinを含むDMEM培地で8時間培養した。1.ヒトiPS細胞の調整工程ヒトiPS細胞株201B7理研BRC番号:HPS0001はマウス線維芽細胞MEF上でDMEM/F1220KSRbFGFを含む培地を用いて維持した。2.胚性内胚葉細胞の作製工程マトリゲルをコートした、平らな培養底面を有する細胞培養容器に、単細胞に分散したヒトiPS細胞を播種し、RPMI1640にB27を添加した分化誘導培地を用いて24時間培養した。24時間後に、ヒト型アクチビンを分化誘導培地に添加した培地に交換し、6日間培養した。培地交換は1回/2日の頻度で行った。3.肝細胞系列の細胞の作製工程AFP、HNF4A陽性細胞の作製工程比較例2に記載の2.胚性内胚葉細胞の作製工程の操作を行なった後、分化誘導培地に10ngbFGF、20ng/mlhBMP4を添加した培地に交換し、3日間培養した。培地交換は1回/2日の頻度で行なった。次に、分化誘導培地に40nghHGFを含む培地に交換し、さらに4日間培養した。培地交換は1回/2日の頻度で行なった。[分析]実施例2の2.胚性内胚葉細胞の作製工程及び比較例2の2.胚性内胚葉細胞の作製工程の細胞を用いて、胚体内胚葉細胞のマーカSox17およびCXCR4の遺伝子発現量を定量PCRにより解析した。実施例2の3.肝細胞系列の細胞の作製工程及び比較例2の3.肝細胞系列の細胞の作製工程の細胞を用いて、肝臓細胞系列の細胞のマーカHNF4AおよびAFPの発現を定量PCRにより解析した。値は、比較例2のマーカの発現量を1とした場合の相対値で示した。[結果]胚性内胚葉細胞への分化誘導の有無を解析した結果を、表2に示した。ここで、SOX17及びCXCR4は胚体内胚葉、AFPは肝細胞系列の細胞のマーカである。実施例2の2.胚性内胚葉細胞の作製工程及び比較例2の2.胚性内胚葉細胞の作製工程の段階では、胚性内胚葉細胞に分化させる工程であることから、SOX17及びCXCR4が多く発現され、AFPの発現量が小さいほど、胚性内胚葉細胞に効率的に分化しているといえる。肝細胞系列の細胞への分化誘導の有無を解析した結果を、表3に示した。ここで、SOX17は胚性内胚葉細胞、HNF4A及びAFPは肝細胞系列の細胞に特異的なマーカである。実施例2の3.肝細胞系列の細胞の作製工程及び比較例2の3.肝細胞系列の細胞の作製工程の段階では、肝細胞系列の細胞に分化させる工程であることから、SOX17の発現量が小さく、HNF4A及びAFPの発現量が多いほど、肝細胞に効率的に分化しているといえる。表4には、表3の肝細胞系列へ分化誘導した後のSOX17の遺伝子発現量を、表2の胚性内胚葉細胞分化誘導後のSOX17の遺伝子発現量と比較し、それぞれの培養条件における発現低下率を示した。実施例2は、胚性内胚葉細胞に特異的なマーカSOX17及びCXCR4の発現量が、比較例2の約5倍及び1.7倍という高い値を示し、肝細胞系列の細胞のマーカがほとんど発現していない。即ち、実施例2マイクロ容器を有する細胞培養容器は、効率的に胚性内胚葉細胞に分化させることができる。実施例2は、肝細胞系列の細胞に特異的なマーカHNF4A及びAFPの発現量が、それぞれ、比較例2の約2倍及び22倍という高い値を示し、胚性内胚葉細胞のマーカが多く発現している。かつ、表4に示したように、肝細胞系列の細胞に分化させた後のSOX17の値について、実施例2は比較例の10分の1であり、肝細胞系列の細胞に分化させた後の細胞のうち、内胚葉系列の細胞が残存している割合が少ないといえる。即ち、実施例2マイクロ容器を有する細胞培養容器は、効率的に胚性内胚葉系列の細胞である肝細胞に分化させることができる。なお、本発明は上記実施の形態に限られたものではなく、趣旨を逸脱しない範囲で適宜変更することが可能である。この出願は、2010年3月23日に出願された日本出願特願2010-066324を基礎とする優先権を主張し、その開示の全てをここに取り込む。"