皮膚表皮内水分保持能を評価する方法であって、次のa~cのステップを含む方法。a個体から皮膚の試料を得るステップb皮膚の試料からアクアポリン遺伝子に対応するmRNA量を定量化するステップcステップbで算出したmRNA量を用いて皮膚表皮内水分保持能を評価するステップアクアポリン遺伝子が、アクアポリン3であることを特徴とする請求項1記載の皮膚表皮内水分保持能を評価する方法。mRNA量を定量化するステップがポリメラーゼ連鎖反応法PCR法によって行われる、請求項1記載の皮膚表皮内水分保持能を評価する方法。皮膚の試料が被験対象の皮膚より採取した角質細胞である、請求項1~3のいずれか一項に記載の皮膚表皮内水分保持能を評価する方法。皮膚表皮内水分保持能を評価するためには、水分付加前後における表皮内水分量を測定する必要がある。その機器としては、前述のごとく近赤外分光光度計や共焦点ラマン分光装置などが知られていた。しかし、これらは表皮内水分量を正確に測定可能ではあるが、被験者の拘束、安静が必要であったり、また皮膚の部位差のため、同一部位を数箇所測定する必要があったりした。さらにこれらの装置は、価格も数千万円ほどするため、機器の導入には経済的負担が大きかった。特別な機器を使用できない場合、被験者の皮膚の生検サンプルを用い、組織学的に解析することにより表皮内水分量を測定する方法もあるが、被験者への負担が大きく、医療機関以外では実施が難しいため実用的ではなかった。すなわち、本発明は、測定環境を選ばず、被験対象者の拘束、安静を必要とせず、非侵襲的かつ簡便、より正確に任意の部位について表皮内水分量を測定し、皮膚表皮内水分保持能を評価する方法を提供することを課題とする。以上の課題の下、本発明者らは、細胞に対して水を付加すると、細胞外が低張になり、細胞内への水の流入による細胞の体積増加が一般に観察される点と、細胞の水輸送量は、アクアポリンの発現量及び/又は機能性により規定されるという知見に基づき、簡便に表皮内水分保持能を測定する方法について鋭意検討した。その結果、アクアポリンのmRNA量を測定することにより、細胞の水分保持能を推定できることを見出した。特に、皮膚においては、表皮外部より水を付加したときに観察される表皮の肥厚は、表皮細胞が水を細胞内に取り込んだ結果観察される現象であるが、この現象と皮膚におけるAQP3遺伝子に対応するmRNA量との間の相関を見出したことから、AQP3のmRNA量を測定することにより、水を付加したときに観察される表皮の肥厚程度、即ち表皮細胞中に取り込まれた水分量である、表皮内水分保持能を測定できることを見出した。これらのmRNA量は、皮膚の試料採取時の外的環境条件を選ばず、任意の部位について、簡便かつ安定的に実施できる。さらに、皮膚の試料採取時には機器を要しないため、大型機器を測定場所へ移動させる必要もなく、場所を選ばず実施することができる利点がある。本発明は、以下に列挙する皮膚表皮内水分保持能を評価する方法を提供する。[1]皮膚表皮内水分保持能を評価する方法であって、次のa~cのステップを含む方法。a個体から皮膚の試料を得るステップb皮膚の試料からアクアポリン遺伝子に対応するmRNA量を定量化するステップcステップbで算出したmRNA量を用いて皮膚表皮内水分保持能を評価するステップ[2]アクアポリン遺伝子が、アクアポリン3であることを特徴とする前記[1]に記載の皮膚表皮内水分保持能を評価する方法。[3]mRNA量を定量化するステップがポリメラーゼ連鎖反応法PCR法によって行われる、前記[1]に記載の皮膚表皮内水分保持能を評価する方法。[4]皮膚の試料が被験対象の皮膚より採取した角質細胞である、前記[1]~[3]のいずれかに記載の皮膚表皮内水分保持能を評価する方法。本発明の方法により、皮膚のAQP3遺伝子に対応するmRNA量を指標にして、表皮内水分保持能を評価する。皮膚の中で最外層に存在する角質細胞をmRNA量測定の試料として用いることから、本発明の皮膚表皮内水分保持能評価法は、皮膚の任意の部位について非侵襲的に実施可能なものとなる。また、角質細胞中のmRNA量は、皮膚の試料採取時の心理的、物理的作用による一過性の変化に影響されないため、環境条件を選ばず、皮膚の任意の部位について、簡便かつ安定的に実施できる。さらに、皮膚の試料採取時には高価な機器を必要とせず、またそのような大型機器を測定場所へ移動させる必要もなく、場所を選ばず実施することができる。本発明は、皮膚のAQP3遺伝子に対応するmRNA量を指標にして皮膚表皮内水分保持能を評価する方法を提供する。ここで言う皮膚表皮内水分保持能とは、皮膚表皮を構成する全ての細胞における水分保持能であり、角質層を構成する細胞だけでなく、基底層、有棘層、顆粒層を構成する細胞中に存在する水分を維持する能力である。表皮の角質層以外の細胞は生きた細胞であり、角質層細胞中よりも圧倒的に多い水分を細胞内に溜め込む能力、すなわち皮膚表皮内水分保持能を有する。また、皮膚表皮内水分保持能は、水、化粧水などの水溶液状の液体を皮膚に付加したときに観察される表皮肥厚の原因となる性質である。そのため、皮膚表皮内水分保持能は、水溶液などを皮膚に付加して観察される表皮肥厚又は表皮厚の変化量を指標にして測定することができる。また、そのような水溶液の付加により、皮膚柔軟性の改善、キメの改善などがみられることから、ここでいう皮膚表皮内水分保持能がこれら皮膚性状に関与していると考えられ、この指標を測定することが美容科学上重要であると考えられる。本発明の皮膚表皮内水分保持能評価法では、被験対象の皮膚より採取した試料を用いてアクアポリン遺伝子に対応するmRNAの定量化を行い、その結果を基に皮膚表皮内水分保持能を評価する。このアクアポリン遺伝子は、AQP3、AQP5及びAQP9より選択される一つ又はそれ以上の遺伝子であることが好ましく、さらにAQP3であることがより好ましい。さらに、皮膚細胞より採取した試料として角質細胞を用いることにより、非侵襲的な評価が可能になる。以下に各GeneSymbolのGeneNameとGenbankAccessionNumberを示す表1。皮膚からの角質細胞の採取の方法は特に限定されないが、可能な限り非侵襲的な採取法を採用することが好ましい。すなわち、角質細胞の採取の際、顆粒層や有棘層等の角質層以外の部分を、可能な限り傷つけないことが望まれる。非侵襲的な採取法としては、例えば、粘着性のテープや接着剤等を皮膚へ付着させた後に剥がす方法や、粗面の材料例えば、不織布等で皮膚表面を擦る方法によって角質細胞を採取することができる。非常に簡便に実施できる点において、前者の方法は特に好ましい。なお、以降に実施される遺伝子発現の定量化に影響しないものである限り、粘着性のテープや接着剤に用いられる材料接着成分は特に限定されない。本発明におけるmRNAの定量化とは、当該遺伝子の転写産物であるmRNAの量を測定することである。又は、mRNAの情報を基に合成される蛋白質の量を測定しても良い。mRNA量の測定には、マイクロアレイ解析や、逆転写反応を行った後にPCR法にて行う方法等を用いることができる。これらの方法は、常法に従って実施すれば良い。各方法について様々なプロトコールが報告されており、当業者であれば公知のプロトコールに従い、又は公知のプロトコールを適宜修正変更したプロトコールによって、適切な測定系を構築し実施することができる。なお、mRNAの定量化の詳細については後述する。一方、蛋白質量の測定であれば、例えば、蛍光物質、色素、酵素等を利用する免疫染色法、ウエスタンブロット法、免疫測定法例えば、ELISA法やEIA法等等を用いることができる。これらの方法についても、常法に従って実施すれば良い。各方法について様々なプロトコールが報告されており、当業者であれば公知のプロトコールに従い、又は公知のプロトコールを適宜修正変更したプロトコールによって、適切な測定系を構築し実施することができる。本発明の皮膚表皮内水分保持能評価法は、好ましくは以下の一連のステップ1~3によって実施される。1被験対象の皮膚より採取した角質細胞を用意するステップ2前記角質細胞から抽出したRNAを試料としてmRNAの定量化を行い、アクアポリン3遺伝子に対するmRNA量を算出するステップ3ステップ2で算出したmRNA量を用いて、皮膚表皮内水分保持能を評価するステップステップ1では、被験対象の皮膚より採取した角質細胞を用意する。以下に、角質細胞の採取法及びRNA抽出法の具体例を示す。a顆粒層や有棘層等を傷つけないように、最外層である角質層の一部を剥離する。例えば、粘着性のテープを皮膚へ付着させた後に剥がし必要に応じて、数回繰り返す、角質細胞を採取する。b採取した角質細胞を、SLS、β-メルカプトエタノール、グアニジンイソチオシアネート等を含む溶解性緩衝液に浸した後、蛋白質分解酵素を加え反応させる。c反応終了後、例えば、超音波破砕機等の物理的な力によって角質細胞を破砕する。d角質細胞破砕物を含む溶液から、周知の核酸抽出法に準じた方法や市販されたキットを用いた方法により、RNAを抽出する。例えば、グアニジンイソチオシアネート、フェノール又はクロロホルムを用いたRNA抽出法や、ニッポンジーン社のISOGEN、インビトロジェン社のTrizolReagent、あるいはQIAGEN社のRNeasyKitやAmbion社のRNAqueous-4PCRKit等を用いる方法によってRNAを抽出する。e必要に応じて、DNA分解酵素を反応させDNAを除去する。f必要に応じて、エタノール沈殿等の核酸濃縮法を用いてRNAを濃縮する。ステップ2では、採取した角質細胞から抽出したRNAを試料としてmRNAの定量化を行う。そして、当該遺伝子に対するmRNA量を算出する。このように、本発明の一態様では、角質細胞中に残存する当該遺伝子に対応するmRNAの定量化を行う。なお、mRNAの定量化では、測定値は絶対値又は相対値比較対象又は標準のmRNA量との比率や差等として算出される。ここで、角質細胞から抽出したmRNAの定量化法の具体例を以下に示す。RT-PCRを用いた方法a抽出したRNAを鋳型に、逆転写酵素を用いてcDNAを合成する。bcDNAを鋳型に、ターゲットとなる遺伝子に対応するプライマーを用いてPCR反応を行い、当該遺伝子に対応するDNA断片を得る。c内部標準となるような遺伝子β-アクチン、GAPDH、ケラチン6B、CTSL2等の反応も並行して行う。d得られたDNA断片の電気泳動を行った後、エチジウムブロマイド等で染色してバンドの強度を測定し、その遺伝子に対応するmRNA量とする。e必要に応じて、SYBRgreen等の蛍光色素やTaqmanprobe等の蛍光プローブを用いて定量PCR反応を行い、mRNAを定量する。f内部標準となる遺伝子に対応するmRNA量に対する、当該遺伝子に対応するmRNA量の比率を算出する。ステップ3では、ステップ2で算出したmRNA量を用いて、皮膚表皮内水分保持能を評価する。例えば、算出したmRNA量を予め設定した基準mRNA量と比較して、その比率を計算する。そして、その比率が、皮膚表皮内水分保持能の評価が関連付けられた複数の区分の中のいずれに該当するのかを調べる。区分の設定に関する具体例を以下に示す。例1皮膚表皮内水分保持能低い:比率<a、中程度:a≦比率<b、高い:b≦比率例1では区分数を3としているが、区分数は特に限定されるものではない。例えば、区分数を2~10のいずれかにすることができる。区分数及び各区分に関連付けられる基準発現量の値の範囲は、予備実験の結果を基に任意に設定可能である。以下、本発明を効果的に説明するために、実験例を挙げる。なお、本発明はこれにより限定されるものではない。実験例1皮膚表皮の厚さの測定と角質細胞採取健常女性被験者6名平均年齢35.3歳を対象として、頬部に化粧水を含浸させたコットンを10分間貼付し、貼付する前後における表皮厚の変化を測定した。表皮厚の測定には、共焦点レーザー顕微鏡VivaScope3000Lucid社製を用い、レーザー強度1.5mWにて深さ1μm毎100枚垂直方向の連続画像を得、顆粒層から真皮内のコラーゲンの線維構造が見え始める画像までの枚数により表皮の厚さを求めた。被験者6名のコットンを貼付する前の表皮厚の平均は37.4μmであったが、コットン貼付後は45.1μmとなり、表皮厚の有意な増加がみられたp=0.0003、図1。この表皮厚の変化は、表皮細胞が水を取り込むことにより体積が増加し表皮の厚さが増加した結果であると考えられる。実験例2頬部の皮膚からの角質細胞採取と角質細胞採取近傍部における表皮厚の測定健常女性被験者10名平均年齢34.7歳を対象として、額部より2cm×2cmの角質層テープストリップを2枚採取した。さらに、その近傍部にて、化粧水を含浸させたコットン貼付前後における表皮厚の変化を実験例1と同様に測定した。実験例3皮膚角質細胞に含まれるRNAの抽出実験例2にて得られた角質細胞に含まれるRNAを、RNA抽出キットAmbion社、RNAqueous-4PCRKitを用いて抽出した。すなわち、角質細胞の付着したテープ2枚を、テープごとLysis/BindingSolutionに入れ、proteinaseKInvitrogen社を添加し、56°Cでインキュベートした。その後、超音波破砕機を用いて分散させた後、64エタノールを加えて攪拌してテープを取り除き、角質細胞抽出液を得た。付属のFilterCartridgeにRNAを吸着させた後、溶出液でRNAを溶出した。得られた溶出液にDNaseIを加え、残存しているDNAを完全に除去した後、エタノールを用いてRNAを沈殿させて濃縮した。得られたRNAのペレットを必要量の水に溶解し、角質細胞に含まれるRNAを得た。実験例4角質細胞に含まれるRNAを用いたAQP3遺伝子のPCR解析皮膚の角質細胞より、実験例3の方法で得たRNAを、SuperScriptIIIOne-StepRT-PCRSystemwithPlatinumTaqDNAPolymeraseInvitrogen社を用いたRT-PCR反応に供し、AQP3及びAQP9に対応するmRNAに対するcDNAを合成した。RT-PCR反応後、リアルタイムPCR反応により、合成したcDNA量を測定し、これを各遺伝子に対応するmRNA量とした。また、同時に、内部標準として、GAPDH遺伝子のmRNA量について、同様の方法にて解析し、各遺伝子の数値をGAPDHの数値にて除したものを、相対mRNA量とした。なお、GAPDH及びアクアポリンのmRNAに対するRT-PCR反応に使用したプライマーは、次の通りである。GAPDH用のプライマーTGAACGGGAAGCTCACTGG配列番号1TCCACCACCCTGTTGCTGTA配列番号2AQP3用のプライマーTGGGTGCTGGAATAGTTTTTGG配列番号3GCTGGTTGTCGGCGAAGT配列番号4AQP5用のプライマーCCCCAGAGCTCCTTAGGAAGA配列番号5CATGCATCCTCACCAGAAATAAAT配列番号6AQP9用のプライマーCGCTGACTGTCCCCTGAAAC配列番号7CAAGAATTCCCATCGAGGATGA配列番号8AQP3、AQP5及びAQP9に対応するmRNA量の相対値と化粧水付加による表皮厚変化量との相関係数は、それぞれR2=0.492、p<0.05、R2=0.349、p<0.1、R2=0.376、p<0.1であり、相関が認められた図2~4。この結果から、AQP3、AQP5及びAQP9遺伝子に対応するmRNA量の相対値は、化粧水などの水溶液を付加したときに観察される表皮厚の変化を反映していることが示された。この場合の表皮厚の変化量の大きさは、細胞内に存在する水の体積に依存していると考えられるため、表皮厚の変化量が表皮細胞の水分保持能を表していると考えられる。そして、表皮厚の変化がアクアポリン遺伝子に対応するmRNA量の相対値と相関が認められたため、このmRNA量は表皮細胞の水分保持能を表していると考えられた。これらの結果から、特に、AQP3と表皮厚変化量とは有意な相関が認められたことから、AQP3に対応するmRNAの量を表皮細胞内の水分保持能に対する指標として用いることが好ましいと考えられた。実験例4化粧水付加における表皮厚の変化と皮膚性状に関する官能評価との関連性実験例2に示した被験者に対して、皮膚性状に関するアンケート調査を行い、化粧水付加における表皮厚の変化とAQP3の相対発現量との関連性を検討するために、相関解析を行った。9項目の質問に対して、10段階で評価させ、表皮厚変化との相関を解析したところ、キメがふっくらしていると感じる、肌がみずみずしいと感じる、ハリがあると感じるという3つの質問項目のスコアと、化粧水付加による表皮厚の変化との間に有意な相関が観察された図5。これらの結果は、皮膚表皮内水分保持能が高いほど、肌に対する官能的評価が高いことを示しており、特に、皮膚のキメ、みずみずしさ、ハリ感についての実感が高いと考えられた。また、AQP3に対応するmRNA量に対して、前記3つの質問項目との相関係数は、それぞれR2=0.638、p<0.006、R2=0.394、p<0.035、R2=0.726、p<0.002となった。このように、AQP3に対応するmRNA量に対する相関性は、化粧水付加による表皮厚の変化に対するものと同等以上であったことから、AQP3に対応するmRNAの量を皮膚表皮内水分保持能の指標として用いることが可能であると考えられた。なお、角質細胞は表皮ケラチノサイトに由来する死滅した細胞であり、前記実験例にて検出されたmRNA量の変化は、表皮を構成し角質層の下層に位置する顆粒細胞、有棘細胞及び基底細胞といった生細胞において生じた生体変化を表していると考えられる。