"ラットに麻酔薬を投与し眠らせた状態で、心房に刺激を与えて心房細動を誘発させることを特徴とする方法。麻酔薬がペントバルビタールである請求項1に記載の心房細動を誘発させる方法。眠らせた状態は、人工呼吸器を用いて呼吸が安定的に保持されている状態である請求項1から2のいずれかに記載の心房細動を誘発させる方法。心房への刺激は、食道に挿入した電極カテーテルの電気刺激による請求項1から3のいずれかに記載の心房細動を誘発させる方法。電気刺激が10秒以上行なわれる請求項4に記載の心房細動を誘発させる方法。そこで、本発明が解決しようとする課題は、ヒトと類似の発症メカニズムを有する発作性心房細動モデル動物を作製し、このモデル動物又はラットに心房細動を高い確率で誘発させることによって、心房細動の予防薬及び治療薬の薬効評価を簡易に行なえるようにすることである。上記課題を解決するために、本発明に係る心房細動モデル動物は、イヌの房室結節領域に電極カテーテルを挿入し、前記電極カテーテルから前記房室結節領域に高周波を通電して前記房室結節を破壊し、房室伝導をブロックすることによって、心房が肥大化されたことを特徴とする。肥大化されたイヌの心房はヒトのそれに近い大きさになるので、心房細動モデルとしての利用価値が大きい。また、本発明に係る心房細動を誘発させる方法は、房室伝導をブロックされた心房細動モデル動物の心房内に電極カテーテルを挿入し、洞結節又は心房中隔を電気刺激することを特徴とする。前記洞結節は心臓のペースメーカとして機能し、また、心房中隔は左心房と右心房とを仕切る壁であるから、これら洞結節又は心房中隔を短時間約10秒間刺激するだけで、心房細動を高い確率で再現性をもって誘発させることができる。また、本発明に係る心房細動を誘発させる方法は、心房細動モデル動物が完全房室ブロック犬以外にラットの場合を含み、ラットに麻酔薬を投与して眠らせた状態で、心房に刺激を与えることを特徴とする。この方法は、非常に簡便であり、またラットも容易に入手できることから、心房細動予防薬等の一次評価試験に最適なものとなる。前記麻酔薬は特に限定していないが、ペントバルビタールが入手の容易さ、使い易さ、麻酔の効き目の点で優れている。また、ラットを安定的に眠らせた状態を保つために、挿管して人工呼吸器を用いることが望ましい。さらに、ラットの場合には心房に直接カテーテルを挿入することが難しいが、食道に挿入した電極カテーテルによる電気刺激によって、心房細動を誘発させることが可能である。一例として、前記食道への電気刺激を約30秒間行なうことで、心房細動は高い確率で誘発される。また、本発明に係る心房細動抑制剤の評価方法は、心房細動モデル動物及びラットのいずれかの心房を電気刺激して心房細動を誘発させた時の心房細動持続時間を計測し、その心房細動が収まった直後に心房細動抑制剤を投与し、投与後所定時間毎に再び同様の方法で心房細動を誘発させ、その時の心房細動継続時間を計測して、心房細動抑制剤の投与前の心房細動持続時間と比較することを特徴とする。さらに、本発明に係る心房細動抑制剤の評価方法の他の手段は、心房細動モデル動物及びラットのいずれかの心房を電気刺激した時に心房細動が誘発される頻度と、心房細動抑制剤を投与した後、所定時間毎に再び同様の方法で心房細動が誘発される頻度とを比較することを特徴とする。本発明は、ヒトで起こる心房細動と同様のメカニズムを有しているイヌの心房細動モデル動物を作製したことから、心房細動のinvivo評価系として優れており、心房細動予防薬や治療のために用いられる薬物のスクリーニングに有効かつ効率的に適用することができる。また、ラットによる心房細動の誘発方法は、非常に簡便であり、またラットも容易に入手できることから、前記心房細動予防薬等の一次スクリーニングの活用に最適なものである。本発明における心房細動モデル動物の作製方法ではイヌを対象としている。イヌの大きさや種類、年齢、雌雄の別などは制約を受けないが、実験動物としての実績があるビークル犬が取扱い易さの点で優れており、特に、体重10kg位の1,2歳のビーグル犬が好ましい。また、本発明における心房細動モデル犬は、慢性房室ブロック犬として作製される。房室伝導を完全にブロックすることで心房の肥大化を図り、それに伴う心房細動の誘発を促進させるためである。以下、完全房室ブロック犬を作製するための一例を説明する。先ず、体重10kgのビーグル犬をペントバルビタールやハロセンなどで麻酔し、さらに呼吸を安定させるために挿管して人工呼吸器から一定量例えば20ml/kgの酸素又は大気を供給する。このようにして、イヌの呼吸を安定させたのち、電極が先端部に取り付けられた電極カテーテルを大腿静脈から房室結節領域に挿入し、先端電極を所定位置に固定する。次いで、電極カテーテルから房室結節領域に高周波500kHz20Wを通電して房室結節を焼き切って破壊し、完全房室ブロック犬を作製する。上記のように、完全房室ブロックを作製することによって、洞結節のペースメーカとしての機能が停止されるため、右心室及び左心室は以後ヒス束のリズムによって血液のポンプ機能を果たすことになる。そのため。心臓から血液を送り出すポンプ機能が低下すると共に心拍数も大幅に減少して心臓に負担が掛かり、結果として心臓全体が肥大化していく。そして、4~6週間後には心臓の大きさが約2倍程度に肥大してしまう。このように、洞結節の機能が損なわれて心房が肥大化してしまうと心房細動が起こり易くなり、心房内で発生する無秩序な興奮旋回によって血栓も生じ易いものとなる。図1は上述した完全房室ブロック犬の術後6週間目の体表面心電図の一部を拡大したものであり、突発性の心房細動を引き起こしていることを示している。即ち、7:47am頃には通常の拍動を打っていたものが、8:47am頃に心房細動を引き起こし、9:45am頃まで約1時間にわたって心房細動が続いた後、10:46am頃に通常の拍動に戻っていることを示す。このように、完全房室ブロック犬は、突発性の心房細動を引き起こし易い特性を持つモデル動物となる。本発明は、上記のように完全房室ブロック犬の肥大化された心房が心房細動を誘発し易い性質を利用し、この心房細動を再現性をもって誘発させることによって抗不整脈薬の薬効評価に応用できることを見出した。本発明では、完全房室ブロック犬に対して、心房細動を高い確率で再現性をもって誘発させるために、洞結節又は心房中隔を電気刺激する。前述したように、洞結節はペースメーカであり、また、心房中隔は左心房と右心房とを隔てている1~2mm程度の壁であることから、これらの洞結節や心房中隔を直接刺激することで、心房細動が高い確率で誘発されることになる。図2は心房、特に洞結節に電気刺激を与えた時の心電図を示す。aは電極カテーテルを大腿静脈から右心房に挿入した時の心内心電図波形、bは電極カテーテルを食道から誘導した左心房の心内心電図波形、cは体表面心電図波形である。前記電極カテーテルを通じて60V、60msの間隔で10秒間通電して電気刺激を加えることで、約2~5秒間心房細動を人工的に起こさせることができる。電気刺激を加えたときに心房細動の発生する確率は、上記完全房室ブロック犬の場合約8割であった。前記洞結節又は心房中隔を電気刺激する方法としては、例えば、前記完全房室ブロック犬を作製する場合と同様、ペントバルビタールやハロセンなどで麻酔し、さらに呼吸を安定させるために挿管して人工呼吸器から酸素又は大気を供給する。このようにして、呼吸を安定させたのち、電極が先端部に取り付けられた電極カテーテルを大腿静脈から右心房内に挿入し、洞結節領域又は心房中隔領域に通電して該部位を電気刺激する。通電は、例えば60V、60ms間隔で約10秒間加えることで、約8割の確率で心房細動を起こさせることができる。本発明者らは、通電時間の違いによって心房細動の起こる確率が異なるか否かを実験した。その実験結果によれば、60V、60ms間隔で1秒間又は3秒間だけ電子刺激を与えた場合には再現性をもって心房細動を誘発させることはできなかったが、電気刺激を10秒間、30秒間、60秒間与えた場合には、いずれも8割以上の再現性をもって心房細動が誘発された。本発明者らは、前記の完全房室ブロック犬以外の心房細動モデル動物についても検討を重ねた結果、通常のラットが電気刺激によって心房細動を再現性をもって誘発されることを見出した。ラットの場合には、上記のように房室伝導をブロックする作業を伴うことなく、通常のラットの心臓に電気刺激を与えるだけの簡易な手段で心房細動を誘発させることができることから、心房細動予防薬等の一次評価試験のモデルとして有用なものとなる。電気刺激の具体的方法としては、例えばラットをペントバルビタールやハロセンなどで麻酔し、前記完全房室ブロック犬の場合と同様、人工呼吸器を用いて呼吸を安定化させる。この状態で、電極カテーテルを食道に挿入し、食道を通してラット心房を電気刺激することで心房細動を誘発させることができる。電気刺激は、例えば、閾値約40V約1.5倍の電圧を12ms間隔で約30秒間加えることで心房細動を約8割の再現性をもって誘発させることができる。本発明者らは、ラットについても通電時間の違いに基づく心房細動の起こる確率を実験した。その実験結果によれば、閾値の約1.5倍の電圧を12msの間隔で1秒間又は3秒間だけ電子刺激を与えた場合には再現性をもって心房細動を誘発させることはできなかったが、電気刺激を10秒間、30秒間、60秒間与えた場合には、いずれも再現性をもって心房細動が誘発され、特に30秒間と60秒間の場合には約8割の確率で心房細動が誘発された。次に、上記完全房室ブロック犬及びラットを心房細動モデルとして使用した場合の薬物の評価試験について説明する。薬物の評価試験は、臨床で使われている心房細動の予防薬や治療薬のみならず、新たに開発した製薬に対する評価実験にも応用することができる。例えば、心房細動の治療薬として長年の間使われているピルジカイニドやジソピラミドなどについて再評価を行なうことができる。評価試験としては、心房細動に対する薬物による抑制効果試験だけでなく、薬物による不整脈の増悪効果の評価モデルとしても利用が可能である。さらには、薬物を投与した時の心拍数や血圧、心電図の変化等に対しても評価することができる。評価試験は以下のようにして行なわれる。例えば、前記完全房室ブロック犬又はラットの心房を電気刺激することによって心房細動を誘発させ、その時の心房細動持続時間を計測する。心房細動が収まった直後に薬物を投与し、投与後所定時間毎、例えば10分、20分、30分、60分経過後に同様の方法で心房細動を誘発させ、その時の心房細動持続時間を計測する。薬物投与前と投与後の心房細動持続時間を比較することで、薬物の治療効果を評価することができる。薬物投与前より投与後の心房細動持続時間の方が短くなっていれば、薬効が認められるとの評価ができる。また、他の評価試験としては、前記完全房室ブロック犬又はラットの心房を薬物を投与せずに電気刺激した時に心房細動が誘発される頻度と、薬物を投与した後、所定時間毎に電気刺激して心房細動が誘発される頻度とを比較することで、薬物の予防効果を評価することができる。薬物投与前より投与後の心房細動発生回数の方が少なくなっていれば、薬効が認められるとの評価ができる。実施例1完全房室ブロック犬の作製生後約1年の雌のビーグル犬約10kgにペントバルビタールをゆっくり静注し30mg/kgし、同時に気管に人工呼吸器を挿管して一定量20ml/kgの酸素又は大気を供給して人工呼吸させる。大腿部を剃毛し、アルコール綿で消毒してから、大腿静脈にガイドワイヤを挿入し、さらにペーシング電極が先端部に取り付けられた電極カテーテルを大腿静脈から右心室まで挿入する。そして、ヒス束心電図が最大に記録できる部位を探して先端の電極を固定する。次に、電極カテーテルの先端電極から房室結節領域に高周波500kHz20Wを10秒間通電して房室結節を破壊し、房室伝導をブロックすることで完全房室ブロック犬を作製した。実施例2心房細動持続時間による薬物評価試験1この薬物評価試験1には、前記実施例1で作製された完全房室ブロック犬を使用し、術後約4~6ヶ月を経過したモデルである。心房細動を人工的に誘発させる方法は、前記完全房室ブロック犬を作製する場合と同様、完全房室ブロック犬にペントバルビタールをゆっくり静注し30mg/kgし、同時に気管に挿管して人工呼吸器から一定量20ml/kgの酸素又は大気を供給して人工呼吸させる。その状態で大腿静脈から電極カテーテルを右心房内に挿入し、洞結節を電気刺激する。この時の電気刺激は、60Vの電圧を、60ms間隔で約10秒間加える。前記電気刺激によって心房細動が誘発されるので、その時の心房細動持続時間を計測する。そして、心房細動が収まった直後にピルジカイニド1mg/kgを大腿静脈内にゆっくり時間を掛けて投与し、投与後15分、30分、45分、60分後に再び電気刺激を与えて心房細動を誘発させ、その時の心房細動持続時間を計測した。これとは別に、前記ピルジカイニドの代わりにコントロールとして生理食塩水1ml/kgを投与して同様の試験を行なった。上記試験結果を図3に示す。この図の縦軸は心房細動の持続時間、横軸はピルジカイニド又は生理食塩水の投与後の経過時間をそれぞれ示す。図3abの試験結果によれば、ピルジカイニド投与前の心房細動持続時間は約2秒程度であったものが、投与後15分後には約0.2秒程度にまで短縮され、その後徐々に投与前の値に戻る傾向が見られた。これに対して、生理食塩水を投与した場合の心房細動持続時間は、ピルジカイニド投与の前後を問わずほとんど一定値を保っている。このことから、ピルジカイニドには心房細動を抑制する効果を持ち、また抑制効果が投与後すぐに現われるとの評価ができる。実施例3心房細動持続時間による薬物評価試験2この薬物評価試験2にはラットを使用した。ラットに心房細動を人工的に誘発させる方法は、上述した完全房室ブロック犬の場合と同様である、先ず、ラットにペントバルビタールをゆっくり腹腔内投与し50mg/kgし、同時に気管に挿管した人工呼吸器から一定量10ml/kgの酸素又は大気を供給して呼吸を安定させる。この状態で、電極カテーテルを食道に挿入し、食道から心房を電気刺激することで心房細動を誘発させた。この時の電気刺激は、閾値の約1.5倍の電圧を12ms間隔で約30秒間加える。上記薬物評価試験1と同様、電気刺激によって誘発されたラットの心房細動の持続時間を計測する。そして、心房細動が収まった直後にピルジカイニド1mg/kgを大腿静脈内にゆっくり時間を掛けて投与し、10分、20分、30分、60分後に再び電気刺激を与えて心房細動を誘発させ、その時の心房細動持続時間を計測した。これとは別に、前記ピルジカイニドの代わりにコントロールとして生理食塩水1ml/kgを投与して同様の試験を行なった。上記試験結果を図4に示す。この図の縦軸は心房細動の持続時間、横軸はピルジカイニド又は生理食塩水の投与後の経過時間をそれぞれ示す。図4abの試験結果によれば、前記薬物評価試験1場合と同様の傾向が見られ、ピルジカイニド投与前の心房細動持続時間は約12秒間であったものが、投与後10分後には約4秒間にまで短縮され、その後徐々に投与前の値に戻る傾向が見られた。これに対して、生理食塩水を投与した場合の心房細動持続時間は、ピルジカイニド投与の前後を問わずほとんど一定値を保っている。このことから、ラットを用いた心房細動モデルも、前記完全房室ブロック犬と同様、ピルジカイニドの薬効を評価することができる。実施例4心房細動誘発率による薬物評価試験この薬物評価試験には、前記実施例1で作製された完全房室ブロック犬を使用した。また、電気刺激を与えて心房細動を人工的に誘発させる方法も実施例1と同様である。この実施例4では時間的間隔を置きながら電気刺激を10回行い、その内で何回心房細動を誘発したかを記録する。そして、心房細動が収まった直後にピルジカイニド1mg/kgを大腿静脈内にゆっくり時間を掛けて投与し、投与後15分、30分、45分、60分後に再び電気刺激を10回与えて、その時に発生した心房細動を記録する。これとは別に、前記ピルジカイニドの代わりにコントロールとして生理食塩水1ml/kgを投与して同様の試験を行なった。上記試験結果を図5に示す。この図の縦軸は心房細動の誘発率、横軸はピルジカイニド又は生理食塩水の投与後の経過時間をそれぞれ示す。図5abの試験結果によれば、ピルジカイニド投与前の心房細動誘発率は約8割であったものが、投与後15分後には約2割、30分後は約2.5割、60分後でも約3割の誘発率であり、心房細動誘発率の有意な低下が認められた。これに対して、生理食塩水を投与した場合の心房細動誘発率は、ピルジカイニドを投与しても有意な低下は認められなかった。このことから、ピルジカイニドには心房細動の誘発を抑制する効果があり、その抑制効果が投与後1時間にわたって持続するとの薬効評価を完全房室ブロック犬によって行なうことができる。実施例5前記実施例3において、ラットに電気刺激を与えた時の心拍数、血圧及び心電図の各指標であるQT間隔電気的心室脱再分極時間、PR間隔房室伝導時間、QRS幅心室興奮時間についての評価を行なった。電気刺激の条件、ピルジカイニド投与量、投与後の計測経過時間は前記実施例3と同様である。その結果を図6、図7及び図8にそれぞれ示す。図6~図8において、縦軸はそれぞれ心拍数、血圧、QT間隔PR間隔QRS幅を示し、横軸はいずれもピルジカイニド投与後の経過時間を示す。なお、この評価試験においても、ピルジカイニドの代わりに生理食塩水を投与して同様の評価を行なった。上記試験結果を図6~図8に示す。その結果によれば、心拍数及び血圧は、ピルジカイニド投与後10分後に僅かに低下したが、一過性のものであってその後は一定している。一方、心電図の各指標QT、PR、QRSには時間経過による変化は認められなかった。"