細胞壁局在性タンパク質分解酵素を有しないラクトコッカスラクティスと、ビフィドバクテリウム属細菌とを用いて、乳原料を発酵させることを特徴とする発酵食品の製造方法。前記ラクトコッカスラクティスは、1W/Wグルコース、及び10W/W還元脱脂粉乳を含む培地に同細菌を培地1ml当たり5.0×106~2.0×108CFU接種し、37°Cで4~24時間培養したときに、当該培地が凝固しない性質を有する、請求項1に記載の方法。前記ラクトコッカスラクティスは、1W/Wグルコース、及び10W/W還元脱脂粉乳を含む培地に同細菌を培地1ml当たり5.0×106~2.0×108CFU、及び、ビフィドバクテリウム属細菌を培地1ml当たり1.0×107~3.0×109CFU、各々接種して培養し、培地のpHが4.6~5.5に達した時点で培地を培養温度から10°Cに急冷して、10°Cで2週間保存したときの溶存酸素濃度を、2ppm以下に維持する性質を有する、請求項1又は2に記載の方法。前記ラクトコッカスラクティスは、1W/Wグルコース、及び10W/W還元脱脂粉乳を含む培地に同細菌を培地1ml当たり5.0×106~2.0×108CFU、及び、ビフィドバクテリウム属細菌を培地1ml当たり1.0×107~3.0×109CFU、各々接種して培養し、培地のpHが4.6~5.5に達した時点で培地を培養温度から10°Cに急冷して、10°Cで2週間保存したときのビフィドバクテリウム属細菌の生残率を30以上に維持する性質を有する、請求項1~3のいずれか一項に記載の方法。前記ラクトコッカスラクティスは、1W/Wグルコース、及び10W/W還元脱脂粉乳を含む培地に同細菌を培地1ml当たり5.0×106~2.0×108CFU、ビフィドバクテリウム属細菌を培地1ml当たり1.0×107~3.0×109CFU、並びに、ストレプトコッカスサーモフィラス及びラクトバチルスデルブルッキーサブスピーシーズブルガリカスをそれぞれ培地1ml当たり1.0×103~9.0×107CFU接種し、37°Cで3~24時間培養したときに、当該培地が凝固する性質を有する、請求項1~4のいずれか一項に記載の方法。前記ラクトコッカスラクティスが、ラクトコッカスラクティスサブスピーシーズラクティス、およびラクトコッカスラクティスサブスピーシーズクレモリスからなる群より選択される、請求項1~5のいずれか一項に記載の方法。前記ラクトコッカスラクティスが、ラクトコッカスラクティスサブスピーシーズラクティスLcL13、ラクトコッカスラクティスサブスピーシーズラクティスLcL26、およびラクトコッカスラクティスサブスピーシーズクレモリスLcC46からなる群より選択される、請求項1~6のいずれか一項に記載の方法。前記ビフィドバクテリウム属細菌が、ビフィドバクテリウムロンガムである請求項1~7のいずれか一項に記載の方法。前記ビフィドバクテリウムロンガムが、ビフィドバクテリウムロンガムATCCBAA999株である請求項8に記載の方法。さらに、ストレプトコッカスサーモフィラスおよびラクトバチルスデルブルッキーからなる群より選択される乳酸菌とを発酵に用いることを特徴とする、請求項1~9のいずれか一項に記載の方法。請求項1~10のいずれか一項に記載の方法により製造された発酵食品。細胞壁局在性タンパク質分解酵素を有しないラクトコッカスラクティスを含むビフィドバクテリウム属細菌入り乳原料発酵用スターター。前記ラクトコッカスラクティスは、1W/Wグルコース、及び10W/W還元脱脂粉乳を含む培地に同細菌を培地1ml当たり5.0×106~2.0×108CFU接種し、37°Cで4~24時間培養したときに、当該培地が凝固しない性質を有する、請求項12に記載のビフィドバクテリウム属細菌入り乳原料発酵用スターター。前記ラクトコッカスラクティスは、1W/Wグルコース、及び10W/W還元脱脂粉乳を含む培地に同細菌を培地1ml当たり5.0×106~2.0×108CFU、及び、ビフィドバクテリウム属細菌を培地1ml当たり1.0×107~3.0×109CFU、各々接種して培養し、培地のpHが4.6~5.5に達した時点で培地を培養温度から10°Cに急冷して、10°Cで2週間保存したときのビフィドバクテリウム属細菌の生残率を30以上に維持する性質を有する、請求項12又は13に記載のビフィドバクテリウム属細菌入り乳原料発酵用スターター。前記ラクトコッカスラクティスは、1W/Wグルコース、及び10W/W還元脱脂粉乳を含む培地に同細菌を培地1ml当たり5.0×106~2.0×108CFU、ビフィドバクテリウム属細菌を培地1ml当たり1.0×107~3.0×109CFU、並びに、ストレプトコッカスサーモフィラス及びラクトバチルスデルブルッキーサブスピーシーズブルガリカスをそれぞれ培地1ml当たり2.0×105~9.0×107CFU接種し、37°Cで3~24時間培養したときに、当該培地が凝固する性質を有する、請求項12~14のいずれか一項に記載のビフィドバクテリウム属細菌入り乳原料発酵用スターター。前記ラクトコッカスラクティスが、ラクトコッカスラクティスサブスピーシーズラクティス、およびラクトコッカスラクティスサブスピーシーズクレモリスからなる群より選択される、請求項12~15のいずれか一項に記載のビフィドバクテリウム属細菌入り乳原料発酵用スターター。前記ラクトコッカスラクティスが、ラクトコッカスラクティスサブスピーシーズラクティスLcL13、ラクトコッカスラクティスサブスピーシーズラクティスLcL26、およびラクトコッカスラクティスサブスピーシーズクレモリスLcC46からなる群より選択される、請求項12~16のいずれか一項に記載のビフィドバクテリウム属細菌入り乳原料発酵用スターター。前記ビフィドバクテリウム属細菌が、ビフィドバクテリウムロンガムである請求項12~17のいずれか一項に記載のビフィドバクテリウム属細菌入り乳原料発酵用スターター。前記ビフィドバクテリウムロンガムが、ビフィドバクテリウムロンガムATCCBAA999株である請求項18に記載のビフィドバクテリウム属細菌入り乳原料発酵用スターター。ラクトコッカスラクティスサブスピーシーズラクティスLcL13、ラクトコッカスラクティスサブスピーシーズラクティスLcL26、およびラクトコッカスラクティスサブスピーシーズクレモリスLcC46からなる群より選択される菌株。前記のように、ビフィズス菌の生育性や保存生残性を改善する種々の方法が開示されているが、さらに改善の余地がある。例えば、上記特許文献1の方法では、ビフィズス菌の生育が促進され、発酵時間を短縮することができるものの、ビフィズス菌の保存生残性については一切記載がない。一方、上記特許文献2の方法では、特定のビフィズス菌と特定の乳酸菌とからなる混合菌を用いることにより、増殖促進効果と生残性改善効果の両方が認められるものの、ビフィドバクテリウムブレーベ以外のビフィズス菌、例えば食品に汎用されているビフィドバクテリウムロンガムについては、一切記載がない。実際に、後述するように、特許文献2に示された菌株FERMBP6224を用いて実験したところ、ビフィドバクテリウムロンガムについては十分な生残性を得ることが出来なかった。また、上記特許文献3に記載の方法では、細胞壁局在性タンパク質分解酵素を有するラクトコッカスラクティスを用いることにより、ビフィズス菌の増殖が促進されるという効果があるが、PrtPは、タンパク質から多くのオリゴペプチドやアミノ酸を生成するため、苦味や旨味が生じてしまい、発酵乳の風味に影響を及ぼす可能性がある例えば、PillidgeCJetalIntDairyJournal200313345354。特許文献4に記載の方法も同様である。さらに、YonezawaSetalJDairySci201093181523、および特許文献3によれば、脱脂粉乳培地における発酵性を有するラクトコッカスラクティスはPrtPを有していることから、特許文献5についても特許文献3と同様に風味に対する課題が残されていた。一方で、PrtPを有していないラクトコッカスラクティスは、脱脂粉乳培地から十分な栄養を取り込むことが出来ないため、ほとんどの菌株は脱脂粉乳培地で生育できず、ビフィズス菌に対する増殖促進効果と生残性改善効果は認められていなかった。本発明は、ビフィドバクテリウム属細菌の保存生残性を改善させ得る乳酸菌を用いた、風味の良い発酵食品の製造方法、及び、該製造方法により製造された発酵食品、並びに前記乳酸菌を含むビフィドバクテリウム属細菌入り乳原料発酵用スターターを提供することを目的とする。本発明者らは、上記課題を解決すべく鋭意研究した結果、細胞壁局在性タンパク質分解酵素PrtPを有していないラクトコッカスラクティスと、ビフィドバクテリウム属細菌とを混合発酵させた場合に、ビフィドバクテリウム属細菌の保存性を向上し得る菌株が存在することを見出し、本発明を完成させた。すなわち、本発明は、細胞壁局在性タンパク質分解酵素を有しないラクトコッカスラクティスと、ビフィドバクテリウム属細菌とを用いて、乳原料を発酵させることを特徴とする発酵食品の製造方法である。また、本発明は、前記方法により製造された発酵食品を提供する。また、本発明は、細胞壁局在性タンパク質分解酵素を有しないラクトコッカスラクティスを含むビフィドバクテリウム属細菌入り乳原料発酵用スターターを提供する。本発明の発酵食品の製造方法、及び、ビフィドバクテリウム属細菌入り乳原料発酵用スターターは、前記ラクトコッカスラクティスは、1W/Wグルコース、及び10W/W還元脱脂粉乳を含む培地に同細菌を培地1ml当たり5.0×106~2.0×108CFU接種し、37°Cで4~24時間培養したときに、当該培地が凝固しない性質を有することを好ましい態様としている。また、本発明は、前記ラクトコッカスラクティスは、1W/Wグルコース、及び10W/W還元脱脂粉乳を含む培地に同細菌を培地1ml当たり5.0×106~2.0×108CFU、及び、ビフィドバクテリウム属細菌を培地1ml当たり1.0×107~3.0×109CFU、各々接種して培養し、培地のpHが4.6~5.5に達した時点で培地を培養温度から10°Cに急冷して、10°Cで2週間保存したときの溶存酸素濃度を、2ppm以下に維持する性質を有することを好ましい態様としている。また、本発明は、前記ラクトコッカスラクティスは、1W/Wグルコース、及び10W/W還元脱脂粉乳を含む培地に同細菌を培地1ml当たり5.0×106~2.0×108CFU、及び、ビフィドバクテリウム属細菌を培地1ml当たり1.0×107~3.0×109CFU、各々接種して培養し、培地のpHが4.6~5.5に達した時点で培地を培養温度から10°Cに急冷して、10°Cで2週間保存したときのビフィドバクテリウム属細菌の生残率を30以上に維持する性質を有することを好ましい態様としている。また、本発明は、前記ラクトコッカスラクティスは、1W/Wグルコース、及び10W/W還元脱脂粉乳を含む培地に同細菌を培地1ml当たり5.0×106~2.0×108CFU、ビフィドバクテリウム属細菌を培地1ml当たり1.0×107~3.0×109CFU、並びに、ストレプトコッカスサーモフィラス及びラクトバチルスデルブルッキーサブスピーシーズブルガリカスをそれぞれ培地1ml当たり2.0×105~9.0×107CFU接種し、37°Cで3~24時間培養したときに、当該培地が凝固する性質を有することを好ましい態様としている。また、本発明は、前記ラクトコッカスラクティスが、ラクトコッカスラクティスサブスピーシーズラクティス、およびラクトコッカスラクティスサブスピーシーズクレモリスからなる群より選択されることを好ましい態様としている。また、本発明は、前記ラクトコッカスラクティスが、ラクトコッカスラクティスサブスピーシーズラクティスLcL13、ラクトコッカスラクティスサブスピーシーズラクティスLcL26、およびラクトコッカスラクティスサブスピーシーズクレモリスLcC46からなる群より選択されることを好ましい態様としている。また、本発明は、前記ビフィドバクテリウム属細菌が、ビフィドバクテリウムロンガムであることを好ましい態様としている。また、本発明は、前記ビフィドバクテリウムロンガムが、ビフィドバクテリウムロンガムATCCBAA999株であることを好ましい態様としている。さらに、本発明は、ストレプトコッカスサーモフィラスおよびラクトバチルスデルブルッキーからなる群より選択される乳酸菌とを発酵に用いることを好ましい態様としている。また、本発明は、ラクトコッカスラクティスサブスピーシーズラクティスLcL13、ラクトコッカスラクティスサブスピーシーズラクティスLcL26、およびラクトコッカスラクティスサブスピーシーズクレモリスLcC46からなる群より選択される菌株を提供する。以下、本発明を詳細に説明する。本発明に用いる細菌は、細胞壁局在性タンパク質分解酵素を有しないラクトコッカスラクティスである。細胞壁局在性タンパク質分解酵素cellwallenvelopedproteinase、EC342196。PrtPとも記載する。は、細胞膜に存在し、細胞表面に活性部位が剥き出しになっている酵素である。ラクトコッカスラクチス由来のPrtP酵素には、PI型α-カゼインをあまり分解せず、β-カゼインをC末端の近辺からよく分解する、PIII型α-カゼイン及びβ-カゼインをC末端及びN末端の両方からよく分解する、及びその中間型PI/PIII型が知られている例えば、ReidJRetalAppliedandEnvironmentalMicrobiology、1994年、第60巻第3号、第801~806ページ。PrtPとして具体的には、ラクトコッカスラクティス由来のPrtPとして、NCBIにアクセッション番号AY542690AY542691等として遺伝子配列が登録されているPrtP、及びそのホモログが挙げられる。ホモログとしては、前記遺伝子配列によってコードされるアミノ酸配列において、1若しくは数個のアミノ酸の置換、欠失、挿入又は付加を含むアミノ酸配列を含み、かつ、PrtP活性を有するタンパク質が挙げられる。1若しくは数個とは、好ましくは1~20個、より好ましくは1~10個、さらに好ましくは1~5個、特に好ましくは1~3である。又、前記ホモログとして、前記アクセッション番号AY542690、又はAY542691の塩基配列によってコードされるアミノ酸配列と80以上、好ましくは90以上、より好ましくは95以上の相同性を有するアミノ酸配列を有するタンパク質であって、かつ、PrtP活性を有するタンパク質が挙げられる。細菌がPrtPを有しないとは、同細菌がPrtPの持つ酵素活性を有しないことを意味し、PrtPタンパク質を有しないか、PrtPタンパク質を持っていても、同タンパク質が酵素活性を有しない場合は、PrtPを有しないに包含される。また、細菌がPrtPを有していても、PrtPを有する菌株に比べて、著しくPrtPタンパク質の量又はその活性が低い場合は、実質的にPrtPを有しないに包含される。ラクトコッカスラクティスは、亜種サブスピーシーズは特に制限されないが、PrtPを有している菌株と、有していない菌株が存在するものが好ましい。具体的には例えば、ラクトコッカスラクティスサブスピーシーズラクティス、及びラクトコッカスラクティスサブスピーシーズクレモリスが挙げられる。PrtPを有しないラクトコッカスラクティスは、自然界から、PrtP活性を有しない菌株、又はPrtPをコードする遺伝子を有しない菌株として選択することによって、取得することができる。PrtPは、細胞外に酵素活性部位を有するため、PrtPを有する菌株は、培地中のタンパク質を分解して、自身の生育に利用することができるが、PrtPを有しない菌株は、培地中のタンパク質を生育に利用することができない。したがって、タンパク質を含む培地、例えば10W/W還元脱脂粉乳を含む培地での生育を観察することにより、PrtPを有しない菌株を選択することができる。また、PrtPをコードする遺伝子を有しない菌株は、例えば実施例に記載したように、PrtP遺伝子又はその一部をPCR法により検出することによって、選択することができる。PrtP遺伝子を増幅するためのプライマーとしては、配列番号1及び2のセット、及び配列番号3及び4のセットが挙げられる。PrtPを有しない菌株は、PrtPを有する菌株から、突然変異法、又は遺伝子組換えにより、PrtP遺伝子を不活化、又は破壊もしくは欠失させることによっても、取得することができる。不活化、又は破壊もしくは欠失させるPrtP遺伝子がコードするPrtPは、PI型、PIII、又はPI/PIII型のいずれであってもよい。PrtPを有しないラクトコッカスラクティスの一態様は、1W/Wグルコース、及び10W/W還元脱脂粉乳を含む培地に同細菌を培地1ml当たり5.0×106~2.0×108CFU接種し、37°Cで4~24時間、例えば16時間培養したときに、当該培地が凝固しない性質を有する菌株である。1W/Wグルコース、及び10W/W還元脱脂粉乳を含む培地は、グルコースが1W/W、及び還元脱脂粉乳が10W/Wとなるように、水に溶解し、殺菌することによって製造することができる。殺菌は、例えば、80~122°Cで40~5分間、好ましくは85~95°Cで35~5分間の加熱処理により行うことができる。前記細菌の細胞数CFUは、適当に希釈した菌の懸濁液を、好適な寒天培地、例えばBCP加プレートカウント寒天培地栄研化学社製に広げて培養し、出現するコロニー数によって測定することができる。培地の凝固の有無は、例えば、試験管等を用いた培養により判定することができる。具体的には、試験管を倒置させ、培地に流動性が無ければ、培地は凝固する、流動性が有れば、培地は凝固しない、と判定される。また、PrtPを有しないラクトコッカスラクティスは、1W/Wグルコース、及び10W/W還元脱脂粉乳を含む培地に同細菌を培地1ml当たり5.0×106~2.0×108CFU、及び、ビフィドバクテリウム属細菌を培地1ml当たり1.0×107~3.0×109CFU、好ましくは1.0×107~5.0×107CFU、各々接種して培養し、培地のpHが4.6~5.5に達した時点で培地を培養温度から10°Cに急冷して、10°Cで2週間保存したときの溶存酸素濃度を、2ppm以下、好ましくは1ppm以下、より好ましくは0.5ppm以下に維持する性質を有することが好ましい。ビフィドバクテリウム属細菌は、培地中の溶存酸素濃度が高いと生育し難くなるため、ラクトコッカスラクティスをビフィドバクテリウム属細菌とともに用いて乳原料を発酵させる場合、ラクトコッカスラクティスは、培地中の溶存酸素濃度を高めないものであることが好ましい。培養温度から10°Cへの急冷は、好ましくは1時間以内、より好ましくは30分以内、特に好ましくは10分以内に行うことが望ましい。培養温度としては、30°C~40°Cが好ましく、36°C~38°Cがより好ましく、37°Cが特に好ましい。以下の記載においても同様である。また、本発明の他の態様では、PrtPを有しないラクトコッカスラクティスは、1W/Wグルコース、及び10W/W還元脱脂粉乳を含む培地に同細菌を培地1ml当たり5.0×106~2.0×108CFU、及び、ビフィドバクテリウム属細菌を培地1ml当たり1.0×107~3.0×109CFU、好ましくは1.0×107~5.0×107CFU、各々接種して培養し、培地のpHが4.6~5.5に達した時点で培地を培養温度から10°Cに急冷して、10°Cで2週間保存したときのビフィドバクテリウム属細菌の生残率を30以上、好ましくは50以上、より好ましくは80以上に維持する性質を有する菌株である。生残率は、保存開始時の生菌数に対する保存後の生菌数の割合をいう。この性質は、前記の培地中の溶存酸素濃度を高めない性質と独立であってもよいが、ラクトコッカスラクティスは両方の性質を有することが好ましい。また、本発明の他の態様では、PrtPを有しないラクトコッカスラクティスは、1W/Wグルコース、及び10W/W還元脱脂粉乳を含む培地に同細菌を培地1ml当たり5.0×106~2.0×108CFU、ビフィドバクテリウム属細菌を培地1ml当たり1.0×107~3.0×109CFU、好ましくは1.0×107~5.0×107CFU、並びに、ストレプトコッカスサーモフィラス及びラクトバチルスデルブルッキーサブスピーシーズブルガリカスをそれぞれ培地1ml当たり2.0×105~9.0×107CFU接種し、37°Cで3~24時間、例えば8時間培養したときに、当該培地が凝固する性質を有することが好ましい。PrtPを有しないラクトコッカスラクティスが、還元脱脂粉乳を含む培地を凝固しないことは、前記培地で単独で発酵性を有しないことを意味しているが、同細菌をビフィドバクテリウム属細菌とともに同培地で培養したときに、培地中の溶存酸素濃度を低下させること、及び、培地を凝固する、すなわち培地のpHを低下させること、並びに、発酵後にビフィドバクテリウム属細菌の生残率を高めることは、本発明のラクトコッカスラクティスが、乳原料からビフィドバクテリウム属細菌を含有する発酵食品の製造に好適であることを示している。したがって、PrtPを有しないラクトコッカスラクティス、特に上記の性質を有する菌株は、ビフィドバクテリウム属細菌を含有する発酵食品を製造するためのスターターとして好適である。本発明のビフィドバクテリウム属細菌入り乳原料発酵用スターターとは、このような、ビフィドバクテリウム属細菌を含有する発酵食品を製造するためのスターター、すなわち、発酵食品を製造するためにビフィドバクテリウム属細菌とともに乳原料に接種される細菌をいう。本発明に用いるラクトコッカスラクティスの具体的菌株としては、ラクトコッカスラクティスサブスピーシーズラクティスLcL13、ラクトコッカスラクティスサブスピーシーズラクティスLcL26、及び、ラクトコッカスラクティスサブスピーシーズクレモリスLcC46が挙げられる。これらの菌株は、平成22年8月11日に、独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センター〒3058566日本国茨城県つくば市東1丁目1番地1中央第6に、各々カッコ内に記載された受託番号で、ブダペスト条約に基づき国際寄託されている。本発明の方法は、上記のような、PrtPを有しないラクトコッカスラクティスと、ビフィドバクテリウム属細菌とを用いて、乳原料を発酵させることにより、発酵食品を製造する方法である。ビフィドバクテリウム属細菌としては、特に制限されないが、ビフィドバクテリウムロンガムBifidobacteriumlongum、ビフィドバクテリウムビフィダムBifidobacteriumbifidum、ビフィドバクテリウムブレーベBifidobacteriumbreve、ビフィドバクテリウムアドレセンティスBifidobacteriumadolescentis、及び、ビフィドバクテリウムインファンティスBifidobacteriuminfantis、ビフィドバクテリウムロンガムサブスピーシーズインファンティスに再分類されているが挙げられる。これらの中では、ビフィドバクテリウムロンガムが好ましい。また、ビフィドバクテリウムロンガムとしてより具体的には、ビフィドバクテリウムロンガムATCCBAA999株が挙げられる。同菌株は、例えば、アメリカンタイプカルチャーコレクション住所12301ParklawnDriveRockvilleMaryland20852UnitedStatesofAmericaから購入することができる。乳原料milkrawmaterialとしては、乳由来の原料であって、PrtPを有しないラクトコッカスラクティス、及びビフィドバクテリウム属細菌、並びに必要に応じて他の乳酸菌を用いて発酵させることにより、発酵食品を製造することができるものであれば特に制限されず、乳又はその分画物又は加工品、例えば牛乳、脱脂乳、生クリーム、バター、全粉乳、及び脱脂粉乳、又はこれらを水に混合、溶解または懸濁させたもの等が挙げられる。乳原料は、必要に応じて蔗糖等の甘味料、ペクチン、果実、フルーツジュース、寒天、ゼラチン、油脂、香料、着色料、安定剤、還元剤等を配合されてもよい。乳原料は、発酵前に、常法に従って殺菌、均質化、冷却等を施してもよい。PrtPを有しないラクトコッカスラクティス、及びビフィドバクテリウム属細菌の乳原料への接種量は特に制限されないが、ラクトコッカスラクティスについては好ましくは104~108CFU/ml乳原料、より好ましくは106~107CFU/ml乳原料、ビフィドバクテリウム属細菌については好ましくは105~109CFU/ml乳原料、より好ましくは107~108CFU/ml乳原料である。また、ラクトコッカスラクティス、及びビフィドバクテリウム属細菌の接種量の比率菌数比は特に制限されないが、1000:1~1:10が好ましく、10:1~1:1がより好ましい。乳原料に接種するPrtPを有しないラクトコッカスラクティスは、単一の菌株であってもよく、複数の菌株であってもよい。また、ビフィドバクテリウム属細菌も、単一の菌株であってもよく、複数の菌株であってもよい。乳原料に接種するラクトコッカスラクティス、及びビフィドバクテリウム属細菌、並びに必要に応じて他の乳酸菌は、予め他の培地で種培養又は前培養しておくことが好ましい。培地としては、ラクトコッカスラクティス、及びビフィドバクテリウム属細菌、並びに必要に応じて他の乳酸菌の培養に適した培地であれば特に制限されないが、例えば、還元脱脂粉乳を含む培地が挙げられる。還元脱脂粉乳の濃度は、3W/W以上が好ましく、8W/W以上が特に好ましい。また種培養又は前培養に用いられる培地には、酵母エキス等の生育促進物質や、L-システイン等の還元剤等を添加してもよい。特にビフィドバクテリウム属細菌は、還元脱脂粉乳を含む培地での増殖性が低いため、生育促進物質、例えば、0.1~1W/Wの酵母エキスを含有する培地を用いることが好ましい。培地の殺菌条件は、前記と同様である。必要に応じて、乳原料に、PrtPを有しないラクトコッカスラクティス、及びビフィドバクテリウム属細菌に加えて、他の乳酸菌を加えて発酵を行ってもよい。他の乳酸菌としては、食品の製造に用いられ得るものであって、ラクトコッカスラクティス及びビフィドバクテリウム属細菌の生育を阻害しないものであれば特に制限されないが、例えば発酵食品がヨーグルトの場合、ストレプトコッカスサーモフィルス、および、ラクトバチルスデルブルッキー等が挙げられる。これらの乳酸菌は、単一の菌株であってもよく、複数の菌株であってもよい。PrtPを有しないラクトコッカスラクティス、及びビフィドバクテリウム属細菌を用いて乳を発酵させた場合、通常、pHが5付近であり、ドリンクヨーグルトが得られる。さらにストレプトコッカスサーモフィルスやラクトバチルスデルブルッキー等の乳酸菌を併用して発酵させると、pHが低下し、よりしっかりとした組織を有したヨーグルトスプーンで摂取できるヨーグルトを製造することができる。ラクトコッカスラクティス及びビフィドバクテリウム属細菌の接種量と、上記他の乳酸菌の接種量の比率菌数比は特に制限されないが、1000:1~10:1が好ましい。ラクトコッカスラクティス、ビフィドバクテリウム属細菌、及び他の乳酸菌を乳原料に接種する順序は特に問わず、全てを同時に投与してもよい。また、これらの細菌のうち任意の細菌を、複数回接種してもよい。培養温度、培養時間等の発酵条件は、通常の乳原料からの発酵食品の製造と同様の条件を採用することができる。例えば、培養温度は30°C~40°Cが好ましく、36°C~38°Cがより好ましい。培養時間は、製造する発酵食品の種類によって適宜設定することができるが、通常、3~18時間が好ましい。得られた発酵食品は、通常の乳原料からの発酵食品と同様に適宜加工することができる。例えば、発酵後の発酵食品をそのまま食品としてもよいし、均質化して液状に加工してもよい。さらに、蔗糖等の甘味料、ペクチン、果実、フルーツジュース、寒天、ゼラチン、油脂、香料、着色料、安定剤、還元剤等を添加してもよい。また、発酵食品は、適宜、容器に充填してもよい。上記のようにして製造される発酵食品は、タンパク質の分解に起因する苦味や旨味が少なく、ビフィドバクテリウム属細菌の保存生残性にも優れている。次に、試験例及び実施例を示して本発明をさらに具体的に説明する。試験例1ラクトコッカスラクティス菌株の取得ラクトコッカスラクティスに属し、PrtP酵素を保有しない菌株を自然界から取得すべく、日本国内の自然界から採集したサンプルを嫌気性希釈液光岡知足著腸内菌の世界、叢文社発行、1980年、第322ページで希釈し、下記組成のBriggsliverbroth前記文献、319ページの平板寒天15gLを含むに塗布し、30°Cで嫌気培養した。嫌気性希釈液塩類溶液I078K2HPO4溶液375ml塩類溶液II047KH2PO4、118NaCl、1202SO4、012CaCl2、025MgSO4H2Oを含む溶液375mlResazurin01水溶液1mlL-システインHClH2O05gL-アスコルビン酸25水溶液2mlNa2CO38溶液50ml寒天05g精製水860mlBriggsliverbrothトマトジュース浸出液400mlネオペプトンDifco15g酵母エキスDifco6g肝臓エキス75mlグルコース20g可溶性でんぷん05gNaCl5gTween801gL-システインHClH2O02g精製水525mlpH68そして、得られたコロニーの中で連鎖球菌の形態を示し、かつ塗布標本の顕微鏡観察によりグラム陽性である菌を釣菌した。これらの菌を、下記組成のBL寒天培地に画線塗布し、前記と同様の方法で嫌気培養を反復し、純粋単離された菌株を得た。BL寒天培地LabLemcopowderOxoid24gプロテオースペプトンNo3Difco10gトリプチケースTrypticaseBBL5gフィトンPhytone3g酵母エキスDifco5g肝臓エキス150mlグルコース10g可溶性でんぷん05g溶液A10mlトーレシリコンSH553510溶液5mlTween801g寒天15gL-システインHClH2O05g馬血液50mlpH72肝臓エキス:肝臓末極東10gを170mlの精製水で50~60°Cの温浴槽中約1時間浸出した後、100°Cで数分間加熱し、pH72に調整してから濾紙で濾過する。溶液A:MgSO47H2O15g、FeSO47H2O05g、NaCl05g、MnSO40337gを精製水250mlに溶解する。L-システインと馬血液以外の成分を湯煎して溶解させ、pHを調整し、115°Cで20分滅菌後、50°Cに冷却し、L-システインと馬血液を加え、シャーレに分注して平板とする。これらの菌株のゲノムDNAの塩基配列を常法により同定した。NCBINationalCenterforBiotechnologyInformation、国立バイオテクノロジー情報センターの国際塩基配列データベースGenBank上で、BLASTBasicLocalAlignmentSearchTool、httpblastncbinlmnihgovBlastcgiによる16SリボソーマルRNA遺伝子配列の全長についての相同性検索を行い、それぞれのタイプストレインと98以上の相同性を有するラクトコッカス属細菌を280株同定した。ラクトコッカスラクティスと98以上の相同性を有していた242菌株のうち、ラクトースを資化し、かつラクトコッカスラクティス亜種のタイプストレインのうちラクトコッカスラクティスサブスピーシーズラクティスに最も相同性が高い群の菌株をラクトコッカスラクティスサブスピーシーズラクティスと同定した。また、ラクトコッカスラクティス亜種のタイプストレインのうちラクトコッカスラクティスサブスピーシーズクレモリスに最も相同性が高い群の菌株をラクトコッカスラクティスサブスピーシーズクレモリスと同定した。得られた菌株はすべて無芽胞、非運動性の通性嫌気性グラム陽性球菌で、カタラーゼおよびガス産生はいずれも陰性であった。続いて、得られたラクトコッカスラクティス株が、PrtP酵素を保有しているか否かを確認した。具体的には、ラクトース及びグルコースを0.5添加したDifco登録商標M17Brothベクトンディッキンソン社製に、BL寒天培地上の各菌株のコロニーを白金耳にて接種し、30°Cで16時間培養した。得られた培養液3を同様の培地に接種し、30°Cで16時間培養した。遠心分離により菌体を得て、DNeasyBloodandTissuekitキアゲン社製を用いてDNAを抽出し、PCR法によりPrtP遺伝子の保有性を確認した。PCRは、JournalofAppliedMicrobiology、2006年、第100巻、第1307~1317ページに記載の手法に準じて行った。プライマーは、フォワードプライマーGBfGCAAATACGGTGACGGCTGCGA、配列番号1及びリバースプライマーGB2rTGAGCATTATAATAGGTCTTCTTCC、配列番号2のプライマーセット、又はフォワードプライマーGHfCAAATACGGTGACGGCTGCTAA、配列番号3及びリバースプライマーGH2rTAGCATTATAATAGGTCTTCGTCA、配列番号4のプライマーセットを用いた。その結果、ラクトコッカスラクティス242株中128株にはPrtP遺伝子の保有が確認された。一方、残りの114株はPrtP遺伝子を保有していないことが判明した。試験例2乳性培地でのラクトコッカスラクティス菌株の発酵性試験ラクトースおよびグルコースを0.5添加したDifco登録商標M17Brothベクトンディッキンソン社製に、試験例1で得られた各菌株、及び表1に記載の菌株の培養液を3接種し、30°Cで16時間培養した。遠心分離により集菌し、洗浄後、元の培養液と同量の乳性培地1W/Wグルコース、10W/W還元脱脂粉乳森永乳業社製に菌体を懸濁し、シードカルチャーを得た。NBRC12007、及びNBRC100676は、独立行政法人製品評価技術基盤機構theNationalInstituteofTechnologyandEvaluation〒2920818千葉県木更津市かずさ鎌足258から入手することができる。また、JCM20101は、独立行政法人理化学研究所微生物系統保存施設JCM〒3510198埼玉県和光市広沢21から入手することができる。また、ATCC9625は、アメリカンタイプカルチャーコレクション住所12301ParklawnDriveRockvilleMaryland20852UnitedStatesofAmericaから入手することができる。次に、前記と同じ組成の乳性培地95°Cで30分間殺菌に、前記各菌株のシードカルチャーを培地1mlあたり50×106~20×108CFU接種し、37°Cで16時間培養した。得られた培養液を10°Cに急冷し、凝固状況、pH、及び含有される乳酸菌数を測定した。乳酸菌数の測定は、市販されているBCP加プレートカウント寒天培地栄研化学社製平板で行った。結果を表1に示す。表中、ENは、×10nを表す。YonezawaSetalJDairySci201093181523に記載されているように、PrtPを有していないラクトコッカスラクティス亜種菌株は、乳性培地を固化しなかった。試験例3PrtPを有しないラクトコッカスラクティスとビフィドバクテリウムロンガムとの混合培養試験まず、ビフィドバクテリウムロンガムATCCBAA999株を、0.6W/W酵母エキス及び11W/W還元脱脂粉乳を含む培地に、培地1mlあたり10×106~50×107CFU接種し、37°Cで16時間培養して、シードカルチャーを得た。また、ラクトースおよびグルコースを0.5添加したDifco登録商標M17Brothベクトンディッキンソン社製に、ラクトコッカスラクティス各菌株の試験例1で得られた培養液を3接種し、30°Cで16時間培養した。各培養菌体を、遠心分離により集菌し、洗浄後、元の培養液と同量の前記と同じ組成の乳性培地に懸濁し、シードカルチャーを得た。前記と同じ組成の乳性培地90°Cで10分間殺菌に、ラクトコッカスラクティスの各菌株のシードカルチャーを培地1mlあたり50×106~20×108CFUと、前記ビフィドバクテリウムロンガムATCCBAA999株のシードカルチャーを培地1mlあたり10×107~50×107CFU接種し、37°Cで16時間培養して発酵乳を得た。前記発酵乳を10°Cに急冷し、pH及び含有されるビフィズス菌数、及び溶存酸素を測定した。ビフィズス菌数の測定は、TOSプロピオン酸寒天培地ヤクルト薬品工業社製平板で行った。また、溶存酸素の測定は、発酵乳の温度を10°Cに保ちながら蛍光式酸素計FO960Sを用いて計測した。測定結果を表2に示す。PrtPを有していない株の中にも、PrtPを有している菌株JCM20101、NBRC100676と同様にビフィズス菌を生残させる菌が存在していた。これらの菌株はいずれも、2週間保存後の発酵乳中の溶存酸素が20ppm以下であった。試験例4試験例3で得られたビフィズス菌含有発酵乳は、ほとんどのpHが5付近であるため、形態はドリンクヨーグルトであった。よりしっかりとした組織を有した発酵乳スプーンで摂取できる通常のヨーグルトを製造するために、ストレプトコッカスサーモフィルスおよびラクトバチルスデルブルッキーサブスピーシーズブルガリクスを培地に添加した以外は、試験例3と同様に乳性培地の発酵を行った。試験例3と同様にラクトコッカスラクチスの各菌株とビフィドバクテリウムロンガムATCCBAA999株のシードカルチャーを、乳性培地に試験例3と同じ接種量で接種し、さらにストレプトコッカスサーモフィルスとラクトバチルスデルブルッキーサブスピーシーズブルガリクスを含むヨーグルトスターターダニスコ社製を、1W/Wグルコース、及び10W/W還元脱脂粉乳を含む培地に、それぞれ培地1mlあたり2.0×106CFU、2.0×105CFU接種し、37°Cで8時間培養して発酵乳を得た。前記発酵乳を10°Cに急冷し、pH及び凝固状態を測定した。結果を表3に示す。ラクトコッカスラクティスが含まれていない系、およびPrtPを有する菌株を含む系では、通常の発酵乳が製造出来たが、ラクトコッカスラクティスサブスピーシーズラクティスLcL49およびラクトコッカスラクティスサブスピーシーズクレモリスLcC53を用いた発酵乳は、pHが下がらず凝固しなかった。試験例5発酵乳の評価後記実施例3に記載の方法で発酵乳ヨーグルトを作製し、5名の専門パネラーに、旨味、苦味について10段階評価してもらった。高い値ほど、その味が強いことを示している。スコア5を超えた場合、発酵乳としては強すぎる味であることを示している。結果を図1に示す。その結果、PrtPを有している菌株を用いて作製した発酵乳は、旨味や苦味が強く感じられた。一方、PrtPを有していない菌株を用いて作製した発酵乳は、旨味や苦味をほとんど感じず、発酵乳本来の風味が損われていなかった。実施例1ラクトコッカスラクティスサブスピーシーズラクティスを用いたドリンクヨーグルトの製造10W/W還元脱脂粉乳を含む培地1000mL90°Cで30分間殺菌に、ラクトコッカスラクティスサブスピーシーズラクティスLcL26株のシードカルチャーを30mL接種し、25°Cで16時間培養した。一方、0.2W/W酵母エキス、及び11W/W還元脱脂粉乳を含む培地1000mL90°Cで30分間殺菌に、ビフィドバクテリウムロンガムATCCBAA999株のシードカルチャーを100mL接種し、37°Cで4時間培養した。なお、ビフィドバクテリウムロンガムATCCBAA999株のシードカルチャーは、0.6W/W酵母エキス及び11W/W還元脱脂粉乳を含む培地に、ビフィドバクテリウムロンガムATCCBAA999株を10×106~50×107CFU接種し、37°Cで16時間培養して、シードカルチャーを得た。これとは別に、原料として脱脂粉乳、全粉乳、蔗糖及びペクチンを混合溶解して、乳脂肪0.5W/W、無脂乳固形分8.0W/W、蔗糖8.0W/W、ペクチン0.2W/Wからなる乳原料50Lを調製し、90°Cで10分間殺菌し、40°Cに冷却した。前記殺菌した乳原料に、前記の通り前培養を行ったラクトコッカスラクティスサブスピーシーズラクティスLcL26株のカルチャー500mLとビフィドバクテリウムロンガムATCCBAA999株のカルチャー500mLを接種し、37°Cで16時間培養して発酵乳を得た。前記発酵乳を15MPaの圧力で均質化し、200mL容のガラス容器に充填した後、発酵乳の温度が10°Cになるまで冷却し、さらに密封して、ドリンクヨーグルトを得た。得られたドリンクヨーグルトは乳酸酸度0.64、pH4.9、1.6×108CFU/mlのビフィズス菌を含有していた。このドリンクヨーグルトを10°Cで14日間保存した時のビフィズス菌数は1.1×108CFU/mlであり、生残率は68であった。また、この時の溶存酸素濃度は093ppmであった。実施例2ラクトコッカスラクティスサブスピーシーズクレモリスを用いたドリンクヨーグルトの製造10W/W還元脱脂粉乳を含む培地1000mL90°Cで30分間殺菌に、ラクトコッカスラクティスサブスピーシーズクレモリスLcC46株のシードカルチャーを30mL接種し、25°Cで16時間培養した。一方、0.2W/W酵母エキス、及び11W/W還元脱脂粉乳を含む培地1000mL90°Cで30分間殺菌に、ビフィドバクテリウムロンガムATCCBAA999株のシードカルチャーを100mL接種し、37°Cで4時間培養した。なお、ビフィドバクテリウムロンガムATCCBAA999株のシードカルチャーは、0.6W/W酵母エキス及び11W/W還元脱脂粉乳を含む培地に、ビフィドバクテリウムロンガムATCCBAA999株を10×106~50×107CFU接種し、37°Cで16時間培養して、シードカルチャーを得た。これとは別に、原料として脱脂粉乳、全粉乳、蔗糖及びペクチンを混合溶解して、乳脂肪0.5W/W、無脂乳固形分8.0W/W、蔗糖8.0W/W、ペクチン0.2W/Wからなる乳原料50Lを調製し、90°Cで10分間殺菌し、40°Cに冷却した。前記殺菌した乳原料に、前記の通り前培養を行ったラクトコッカスラクティスサブスピーシーズクレモリスLcC46株のカルチャー500mLとビフィドバクテリウムロンガムATCCBAA999株のカルチャー500mLを接種し、37°Cで16時間培養して発酵乳を得た。前記発酵乳を15MPaの圧力で均質化し、200mL容のガラス容器に充填した後、発酵乳の温度が10°Cになるまで冷却し、さらに密封して、ドリンクヨーグルトを得た。得られたドリンクヨーグルトは乳酸酸度0.66、pH4.8、9.6×107CFU/mlのビフィズス菌を含有していた。この前記ドリンクヨーグルトを10°Cで14日間保存した時のビフィズス菌数は6.9×107CFU/mlであり、生残率は71であった。また、この時の溶存酸素濃度は088ppmであった。実施例3ラクトコッカスラクティスサブスピーシーズラクティスを用いたヨーグルトの製造I還元脱脂粉乳10W/Wを含む培地115°C、20分殺菌1000mLに、ラクトバチルスデルブルッキーサブスピーシーズラクティスFERMBP10758株のシードカルチャーを30mL接種し、37°C、16時間培養した。一方、酵母エキス0.1W/W、及び還元脱脂粉乳10W/Wを含む培地90°Cで30分間殺菌1000mLにストレプトコッカスサーモフィルスFERMP17216株のシードカルチャーを30mL接種し、37°C、5時間培養した。なお、ラクトバチルスデルブルッキーサブスピーシーズラクティスFERMBP10758株のシードカルチャーは、0.1W/W酵母エキスおよび10W/W還元脱脂粉乳を含む培地に、10×105~10×107CFU接種し、37°Cで16時間培養して得た。なお、ストレプトコッカスサーモフィルスFERMP17216株のシードカルチャーは、0.1W/W酵母エキスおよび10W/W還元脱脂粉乳を含む培地に、10×105~10×107CFU接種し、37°Cで16時間培養して得た。脱脂粉乳、クリーム及び乳タンパク質などの原料を混合溶解して、乳脂肪3.0W/W、無脂乳固形分12.0W/Wからなる乳原料50Lを調製し、70°Cに加温し、15MPaの圧力で均質し、90°Cで10分間殺菌し、40°Cに冷却した。この殺菌した乳原料に、前記の通り前培養を行ったラクトバチルスデルブルッキーサブスピーシーズラクティスFERMBP10758株のカルチャーを50ml、ストレプトコッカスサーモフィルスFERMP17216株のカルチャーを450mL、実施例1のLcL26株と同様の方法にて前培養を行ったラクトコッカスラクティスサブスピーシーズラクティスLcL13株のカルチャー500mLとビフィドバクテリウムロンガムATCCBAA999株のカルチャー500mLを接種し、37°Cで4時間培養して発酵乳を得た。得られた発酵乳は、直ちに発酵乳の温度が10°Cになるまで攪拌冷却し、さらに、100mL容の紙カップ容器に充填し、密封して、ヨーグルトを得た。得られたヨーグルトは乳酸酸度0.74、pH4.69であり、1.0×108CFU/mlのビフィズス菌を含有していた。このヨーグルトを10°Cで14日間保存した時のビフィズス菌数は9.3×107CFU/mlであり、生残率は93であった。また、この時の溶存酸素濃度は05ppm以下であった。実施例4ラクトコッカスラクティスサブスピーシーズラクティスを用いたヨーグルトの製造II脱脂粉乳、クリーム及び乳タンパク質を混合溶解して、乳脂肪3.0W/W、無脂乳固形分12.0W/Wからなる乳原料50Lを調製し、70°Cに加温し、15MPaの圧力で均質し、90°Cで10分間殺菌し、40°Cに冷却した。この殺菌した乳原料に、実施例1と同様にして得られたラクトコッカスラクティスサブスピーシーズラクティスLcL26株のカルチャー500mLと、ビフィドバクテリウムロンガムATCCBAA999株のカルチャー500mL、さらにストレプトコッカスサーモフィルスとラクトバチルスデルブルッキーサブスピーシーズブルガリクスを含むヨーグルトスターターダニスコ社製0.002を接種し、37°Cで8時間培養して発酵乳を得た。得られた発酵乳は、直ちに発酵乳の温度が10°Cになるまで攪拌冷却し、100mL容の紙カップ容器に充填し、密封し、ヨーグルトを得た。得られたヨーグルトは、乳酸酸度0.65、pH4.84であり、1.2×108CFU/mlのビフィズス菌を含有していた。このヨーグルトを10°Cで14日間保存した時のビフィズス菌数は1.0×108CFU/mlであり、生残率は83であった。また、この時の溶存酸素濃度は05ppm以下であった。実施例5ラクトコッカスラクティスサブスピーシーズラクティスを用いたヨーグルトの製造III脱脂粉乳、クリーム及び乳タンパク質を混合溶解して、乳脂肪3.0W/W、無脂乳固形分12.0W/Wからなる乳原料50Lを調製し、70°Cに加温し、15MPaの圧力で均質し、90°Cで10分間殺菌し、40°Cに冷却した。この殺菌した乳原料に、実施例1と同様にして得られたラクトコッカスラクティスサブスピーシーズラクティスLcL26株のカルチャー500mLと、ビフィドバクテリウムロンガムATCCBAA999株の凍結菌体森永乳業社製15×1014CFU、さらにストレプトコッカスサーモフィルスとラクトバチルスデルブルッキーサブスピーシーズブルガリクスを含むヨーグルトスターターダニスコ社製0.002を接種し、37°Cで4時間培養して発酵乳を得た。得られた発酵乳は、直ちに発酵乳の温度が10°Cになるまで攪拌冷却し、100mL容の紙カップ容器に充填し、密封して、ヨーグルトを得た。得られたヨーグルトは、乳酸酸度0.70、pH4.74であり、4.2×109CFU/mlのビフィズス菌を含有していた。このヨーグルトを10°Cで14日間保存した時のビフィズス菌数は2.0×109CFU/mlであり、生残率は47.6であった。また、この時の溶存酸素濃度は147ppmであった。