"以下の式:で表される化合物を生産する方法であって、下記a~eからなる群から選ばれるDNAによりコードされるタンパク質及び/又はi~vからなる群から選ばれるDNAによりコードされるタンパク質を発現することを特徴とするアオウキクサ株にストレスを加え、当該ストレスを加えたアオウキクサ株から上記化合物を溶媒抽出し、そして精製することを含む、前記方法。配列番号1で表される塩基配列からなるDNA;配列番号1で表される塩基配列からなるDNAと相補的な塩基配列からなるDNAと高ストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、かつ9位生成物特異性リポキシゲナーゼ活性体をコードするDNA;配列番号3で表されるアミノ酸配列からなるタンパク質コードするDNA;配列番号3で表されるアミノ酸配列と少なくとも99の同一性を有する配列からなり、かつ9位生成物特異性リポキシゲナーゼ活性を有するタンパク質コードするDNA;配列番号3で表わされるアミノ酸配列において1若しくは数個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなり、かつ9位生成物特異性リポキシゲナーゼ活性を有するタンパク質コードするDNA;i配列番号2で表される塩基配列からなるDNA;ii配列番号2で表される塩基配列からなるDNAと少なくとも90の同一性を有し、かつアレンオキサイドシンターゼ活性体をコードするDNA;iii配列番号2で表される塩基配列からなるDNAと相補的な塩基配列からなるDNAと高ストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、かつアレンオキサイドシンターゼ活性体をコードするDNA;配列番号4で表されるアミノ酸配列からなるタンパク質コードするDNA;配列番号4で表わされるアミノ酸配列において1若しくは数個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなり、かつアレンオキサイドシンターゼ活性を有するタンパク質をコードするDNA。前記アオウキクサ株が、配列番号1で表される塩基配列からなるDNAによりコードされるリポキシゲナーゼ及び配列番号2で表される塩基配列からなるDNAによりコードされるアレンオキサイドシンターゼを発現することを特徴とする、請求項1に記載の方法。前記ストレスが、乾燥ストレス、熱ストレス、及び浸透圧ストレスからなる群から選ばれる、請求項1又は2に記載の方法。前記溶媒が、クロロホルム、酢酸エチル、エーテル、及びブタノールからなる群から選ばれる、請求項1~3のいずれか一項に記載の方法。本発明は、収量の点で改良されたKODAの製造方法を提供することを目的とする。本発明者らが、上記課題を解決するために鋭意研究を行い、様々なアオウキクサ株をスクリーニングした結果、他のアオウキクサ株に比べて、アオウキクサSH株が極めて高いレベルのKODAを生産することを発見した。上記の発見に基づき、本発明者らは、抽出法に基づくKODAの製造方法においてアオウキクサSH株を出発物質として用いることにより、高い収量でKODAを製造する方法を提供する。さらに本発明者らは、KODA高生産株であるアオウキクサSH株の代謝経路に着目し、アオウキクサにおいて9位生成物特異性リポキシゲナーゼの遺伝子配列、並びにアレンオキサイドシンターゼの遺伝子配列を初めて同定した。当該配列番号1及び配列番号2の塩基配列は共にアオウキクサSH株由来の配列である。したがって本発明者らは、抽出法に基づくKODAの製造方法において、配列番号1及び/又は配列番号2で表される配列からなるDNA、又は当該DNAと実質的に同一なDNAからなる遺伝子を含むアオウキクサ株を用いることにより、高い収量でKODAを製造する方法を提供する。本発明は、さらに上に記載されたKODA高生産アオウキクサ株を用いた製造方法より生産されたKODAも提供する。本発明のKODAを生産する方法は、KODA高生産性の特定のアオウキクサ株にストレスを加え、当該ストレスを受けたアオウキクサ株からKODAを溶媒抽出し、そして精製することを含んでなる。本発明のある態様では、本発明において使用されるKODA高生産性の特定のアオウキクサ株は、配列番号1で表される塩基配列からなるDNAと同一又は実質的に同一なDNA及び/又は配列番号2で表される塩基配列からなるDNAと同一又は実質的に同一なDNAによりコードされるタンパク質を発現する株である。さらには、本発明において使用されるKODA高生産性の特定のアオウキクサ株は、配列番号3で表されるアミノ酸配列からなるタンパク質と同一又は実質的に同一なタンパク質、及び/又は配列番号4で表されるアミノ酸配列からなるタンパク質と同一又は実質的に同一なタンパク質を発現する株である。配列番号3は、アオウキクサSH株由来の9位生成物特異性リポキシゲナーゼのアミノ酸配列であり、配列番号4は、アオウキクサSH株由来のアレンオキサイドシンターゼのアミノ酸配列である。KODAは、植物中でリノレン酸からLOX及びAOSの作用を受けて生成されるので、KODA高生産性のアオウキクサSH株が有するLOX及び/又はAOSと同一又は実質的に同一なLOX及び/又はAOSを発現する株は、アオウキクサSH株と同様にKODAの生産性が高いと考えられる。ここで、実質的に同一なDNAとは、参照元のDNAに対して、少なくとも70の同一性を有し、かつ転写翻訳された場合に、参照元のDNAが転写翻訳されて生成するタンパク質の酵素活性と同一の酵素活性を有するタンパク質をコードするDNAを指す。同一性は、好ましくは、少なくとも80、少なくとも90、少なくとも95、少なくとも97、少なくとも98、少なくとも99、少なくとも995、又は少なくとも999である。また、実質的に同一なDNAは、高ストリンジェント条件下で参照元のDNAと相補的な塩基配列からなるDNAにハイブリダイゼーションすることができ、参照元のDNAがコードするタンパク質の酵素活性と同一の酵素活性を有するタンパク質をコードするDNAを指す。ハイブリダイゼーションは周知の方法又はそれに準じる方法、例えばJSambrookら、MolecularCloning2ndColdSpringHarborLabPress1989に記載の方法に従って行うことができ、そして高ストリンジェントなハイブリダイゼーション条件とは、例えばNaCl濃度が約10~40mM、好ましくは約20mM、温度が約50~70°C、好ましくは約60~65°Cであることを含む条件をいう。更に、本発明は上記DNA配列の断片であって、元のDNAがコードするタンパク質の酵素活性を有するタンパク質をコードするDNA断片にも関する。実質的に同一なタンパク質とは、参照元のタンパク質のアミノ酸配列において1若しくは数個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなり、かつ参照元のタンパク質の活性を有するタンパク質をいう。さらに、実質的に同一なタンパク質とは、参照元のアミノ酸配列と少なくとも98の同一性を有する配列からなり、かつ参照元のタンパク質の活性を有するタンパク質をいう。同一性は、好ましくは、少なくとも99、少なくとも995、又は少なくとも999である。本発明のKODAの製造方法は、抽出法を利用する。具体的には、アオウキクサの破砕物を遠心分離にかけ、得られた上清と沈澱物のうち、上清を除いたものがKODAを含む画分として次の工程に用いられる。かかる画分を出発物としてKODAを単離精製することが可能である。アオウキクサによるKODAの生産を促進するため、遠心分離にかける前にアオウキクサに以下に説明する特定のストレスを与えることが好ましい。そして、さらに調製効率の上で好ましい出発物として、アオウキクサを浮かばせた又は浸漬した後の水溶液を挙げることができる。この水溶液は、アオウキクサが生育可能なものである限りにおいて特に限定されない。この水溶液の具体例は、後述する実施例において記載する。浸漬時間は、室温で2~3時間程度でも可能であるが、特に限定されるべきものではない。また、この方法でKODAを調製する場合にも、あらかじめアオウキクサにKODAを誘導することができる特定のストレスを与えることが製造効率上好ましい。具体的には、特定のストレスとして乾燥ストレス、熱ストレス、浸透圧ストレス等を挙げることができる。乾燥ストレスは、例えば低湿度で室温下、好ましくは24~25°C程度で、アオウキクサを乾燥したフィルター紙上に広げた状態で放置することによって与えることができる。この場合の乾燥時間は、概ね20秒以上、好ましくは5分以上、より好ましくは15分以上である。熱ストレスは、例えば温水中にアオウキクサを浸漬することによって与えることができる。この場合の温水の温度は、40°C~65°Cであり、好ましくは45°C~60°C、より好ましくは50°C~55°Cである。また、温水に処理する時間は、概ね5分程度で足るが、比較的低温の場合、例えば40°C程度の温水中でアオウキクサを処理する場合は、2時間以上処理することが好ましい。また、上記熱ストレス処理後は、速やかにアオウキクサを冷水中に戻すことが好ましい。浸透圧ストレスは、例えば高濃度の糖溶液等の高浸透圧溶液にアオウキクサを接触させることにより与えることができる。この場合の糖濃度は、例えばマンニトール溶液であれば03M以上、好ましくは05M以上であることが好ましい。処理時間は、例えば05Mマンニトール溶液を用いる場合は1分以上、好ましくは3分以上である。このようにして、所望する本発明のKODAを含む出発物を調製することができる。次に、上記のように調製した出発物に以下のような分離精製手段を施して、所望するKODAを製造することができる。なお、ここに示す分離手段は例示であり、これらの分離手段に上記出発物からKODAを製造するための分離手段が限定されるものではない。まず、上記出発物に対して溶媒抽出を行い、本発明KODAを含有する成分を抽出することが好ましい。かかる溶媒抽出に用いる溶媒は特に限定されるものではなく、例えばクロロホルム、酢酸エチル、エーテル、ブタノール等を用いることができる。これらの溶媒の中でもクロロホルムは、比較的容易に不純物を除去することが可能であるという点において好ましい。この溶媒抽出で得られた油相画分を、通常公知の方法を用いて洗浄濃縮し、ODSカラム等の逆相分配カラムクロマトグラフィー用カラムを用いた高速液体クロマトグラフィーにかけて、花芽誘導活性画分を同定単離することにより本発明KODAを単離することができる。なお、出発物の性質等に応じて通常公知の他の分離手段、例えば限外濾過、ゲル濾過クロマトグラフィー等を組み合わせて用いることも可能である。実施例1:KODA高生産アオウキクサ株のスクリーニング様々な場所から採取された62種類のアオウキクサを準備し、1/2倍に稀釈したHutnerの培地中において、24~25°Cの昼光色蛍光ライトからの連続的な光照射の下で継代培養した。1/2倍に稀釈したHutnerの培地は、次の成分:スクロース10g/lK2HPO4200mg/lNH4NO3100mg/lEDTA遊離酸250mg/lCa4H2O176mg/lMgSO47H2O250mg/lFeSO47H2O124mg/lMnCl24H2O892mg/lZnSO47H2O328mg/lNa2MoO42H2O126mg/lH3BO371mg/lCo6H2O01mg/lCuSO45H2O197mg/lを含み、KOH50を用いてpH6.2~6.5に調整した。増殖したアオウキクサをろ紙上に広げ、2時間放置した後、水中に1時間浸漬した。その水を高速液体クロマトグラフィー、流速1mLmin、カラム温度40°Cを用いてKODAの濃度を分析した。全てのアオウキクサ株のKODA生産量の平均は497μMであった。その中で、アオウキクサSH株は602μMのKODAを生産しており、全株の平均KODA生産量の約12倍も多く、極めて高い生産量を与えた。実施例2:アオウキクサSH株由来リポキシゲナーゼのクローニングとその活性測定アオウキクサからRNeasyPlantMiniKitを用いて全RNAを抽出後、全RNA18μgを鋳型としてLongRange2StepRTPCRKitによりcDNAを合成した。その後、cDNAを鋳型とし、下記縮重プライマーを用いて縮重PCRを行い、目的とする9リポキシゲナーゼの部分配列を得た。LpDPf5GCITGGMGIACIGAYGARGARTTY3LpDPr5GCRTAIGGRTAYTGICCRAARTT3ここで、Iはイノシンを表す。当該部分配列の塩基配列の決定を行い、得られた配列情報を元にBLAST検索を行った結果、得られた配列は複数の既知植物由来のLOXに対して高い相同性を示したCorylusavellanaセイヨウハシバミ75、Actinidiadeliciosaキウイフルーツ74、Solanumtuberosumジャガイモ75、Oryzasativaイネ76、Nicotianatabacumタバコ74、Cucumissativusキュウリ75、Arabidopsisthalianaシロイヌナズナ73など。この配列情報をもとに、以下の3または5RACE法用のプライマーを作成し、3RACE、5RACE法により全長配列を決定した図2。SH3TP5AGCTCTTCATCTTGGACC3SH5TP5TTTCATCCTTCTTGTCGC3得られたSHLpLOSXの配列を、タンパク質発現用ベクターに導入し、大腸菌Novagenに形質転換し、SHLpLOXタンパク質を発現させた。このSHLpLOXタンパク質を用いてKODA製造における活性試験を行った。KODA製造における活性試験は、5mMリノレン酸溶液、02Mのリン酸ナトリウム緩衝液、蒸留水を加えた水溶液中に、酵素液を加え、室温で30分間反応させた。反応終了後に反応液をHPLCに供し、生成するリノレン酸ヒドロペルオキシドの部位特異性および生成量を測定した。HPLC分析は、カラム:カプセルパックC18UG120、カラム温度40°C、移動相:50アセトニトリル溶液、流速:1ml/min、検出波長:210nmで行った。この場合において、9位特異的な対照酵素として、イネ胚芽由来の9位特異的なリポキシゲナーゼであるr9LOX1を用いた。アオウキクサSH株から得られた新規LOXが、既知の9位生成物特異性リポキシゲナーゼの中でも活性が強いとされていたr9LOX1よりはるかに活性の高い9位生成物特異性リポキシゲナーゼであることが明らかとなった。これらアオウキクサ由来の新規LOXの中で、リノレン酸-9-ヒドロペルオキシド体の生成量が最も高かったSHLpLOXのカイネティクス解析を行った。40mMリン酸バッファーpH6.0、0.1Tween80の反応液を用い、反応温度は25°Cで行った。基質であるα-リノレン酸は、10~100μMの基質濃度で試験した。反応液100μLをキュベットに加え、SmartSpecPlusスペクトロフォトメーターBio-Radを用い、234nmの吸光度を、15秒のインターバルで経時的に10分間スキャニングした。測定したA234から反応産物の量を算出したe=25,000。カイネティックパラメーターはHanes-Woolfプロット[S]/vversus[S]プロットを用いて決定した。この結果、表1に示すように、SHLpLOXでは、基質との親和性パラメーターであるKm値がr9-LOX1より低く、SHLpLOXが基質であるα-リノレン酸との親和性が高いことを示している。また、最大反応速度Vmaxはr9-LOX1とSHLpLOXは、ほぼ同程度ではあるが、単位時間当たりの反応回数であるkcat値はSHLpLOXのほうがr9-LOX1と比較して高かった。酵素活性の指標となるkcat/Km値は、SHLpLOXがr9-LOX1の約1.6倍となった。このことから、アオウキクサSH株由来の新規9-LOXが非常に高活性の9-LOXであることが明らかとなった。実施例3:アオウキクサSH株からAOS遺伝子のクローニングと活性測定アオウキクサSH株からRNAを抽出し、RTPCR法によりcDNAを合成した。合成したcDNAを、以下に示すシロイヌナズナ由来プライマーを使用し、PCRのアニーリング温度を45°Cと低めに設定し、SH株由来アレンオキサイドシンターゼの一部配列情報を得た。AOSForward5GGAACTAACCGGAGGCTACCG3AOSReverse5CCGTCTCCGGTCCATTCGACCACAA3この配列情報をもとに、3または5RACE法により全長配列を決定した。この結果、SH株より1配列の新規AOSホモログが得られた。得られたSHLpAOSの配列を、タンパク質発現用ベクターに導入し、大腸菌Novagenに形質転換し、SHLpAOSタンパク質を発現させた。このSHLpAOSタンパク質を用いてKODA製造における活性試験を行った。KODA製造における活性試験は、5mMリノレン酸溶液を作成し、pH7の条件下で、イネの胚芽より抽出したリポキシゲナーゼと室温で10分間反応させ、9ヒドロペルオキシリノレン酸反応溶液を合成した。この9HPOT反応溶液20μlに対し、SHLpAOSタンパク質またはシロイヌナズナ由来AOSタンパク質032ngを加え、室温で10分間反応させた。反応後、50度で3分間の加熱処理により反応を終了させた。この溶液10μlをHPLCで分析した。HPLC分析は、カラム:カプセルパックC18UG120、移動相:50アセトニトリル溶液、流速:1ml/min、検出波長:210nmで行った。その結果、SHLpAOSタンパク質はAtAOSタンパク質より7倍近く活性が強かった。アオウキクサSH株より得られたSHLpAOSのカイネティクス解析を行った。40mMMリン酸バッファーpH7.5、1EtOHの反応液を用い、反応温度は25°Cで行った。基質である9-HPOTは5-53μMの基質濃度で試験した。nあお、基質となる9-HOPTはEtOH溶液として添加し、EtOH終濃度が1となるように調製した。反応液100μLをキュベットに加えSmartSpecPlusスペクトロフォトメーターBio-Radを用い、234nmの吸光度の減少を、2秒のインターバルで経時的に1分間スキャニングした。測定したA234から反応産物の量を算出したe=25,000。カイネティックパラメーターは、Hanes-Woolfプロット[S]/vversus[S]プロットを用いて決定した。この結果、表2に示すようにSHLpAOSでは、Km値がAtAOSより大幅に低く、9-HPOTとの親和性は約5倍高かった。また、VmaxはAtAOSの約2.8倍と非常に高かった。kcat値もSHLpAOSのほうがAtAOSの約2.8倍と高いものであり、反応回転が非常に効率的に起こっている。kcat/Km値は、SHLpAOSがAtAOSの約14倍となった。SHLpAOSがAtAOSと比較して、実用的なKODA製造において非常に有用なAOSであると考えられる。以上のことから、アオウキクサSH株からクローニングしたSHLpAOSは、これまでに報告のない、非常に高い活性を有するAOSであることが明らかとなった。"