"花卉の複対立遺伝子HZ、HD又はその両方のエクソン部分に、配列番号4の塩基配列又はそれらの配列と60以上の同一性を有する若しくはそれらの配列とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列を含むレトロトランスポゾンを挿入することを含む、ただし複対立遺伝子HD又はHZが、フラボノイド生合成の前駆物質でのB環の水酸化に関して3’,5’位の水酸化を制御し、デルフィニジンDpnの生合成に関与する遺伝子である、花卉の花色を改変する方法。エクソンが第1エクソンである、請求項1に記載の方法。花色の改変が、複対立遺伝子HD又はHZの機能を失い、新たに複対立遺伝子HT又はHFの機能を獲得することによって生じる、ただし複対立遺伝子HTが、フラボノイド生合成の前駆物質でのB環の水酸化に関して3’位の水酸化を制御し、ペラルゴニジンPgnとシアニジンCynの生合成に関与する遺伝子であり、複対立遺伝子HFがフラボノイド生合成の前駆物質でのB環の水酸化に関して、ペラルゴニジンPgnの生合成に関与する遺伝子である、請求項1又は2に記載の方法。花卉が、双子葉植物又は単子葉植物から選択される、請求項1~3のいずれか1項に記載の方法。上記の特許文献の中で、遺伝子にトランスポゾン及び/又はレトロトランスポゾンが挿入された遺伝子、並びに遺伝子にトランスポゾンが挿入されたものの抜けた状態でフットプリントを残した遺伝子が明らかにされ、さらに、遺伝子にトランスポゾン及び/又はレトロトランスポゾンを挿入することによって植物の様々な発現を人為的に制御できることが明らかにされたが、花色発現に関わる複対立遺伝子とトランスポゾン及び/又はレトロトランスポゾンとの関係については、記載はなかったし、また、これらのDNA断片の長さを電気泳動法によって分析し、その組み合わせにより、これらを区別して、遺伝子型を判定することは知られていたが、それらの遺伝子型を有する個体及び/又は系統がどのような花色/果色を有するか判定することができなかった。さらに、これに関連して、トランスポゾン及び/又はレトロトランスポゾンが挿入された遺伝子を保有する遺伝子型が花色に関する遺伝子型育種法で後代にどのように遺伝するか曖昧であり、実用化する場合問題がある。また、非特許文献12に記載されるHf1/hf1で表されたペチュニアの花色素の遺伝について、基本的にメンデルの遺伝の法則に従うはずであるが、hf1遺伝子型には2種類以上存在することの記載があることから、後代の分離に曖昧な点があるため実用化には至っていない。さらに、トランスポゾン及び/又はレトロトランスポゾンが挿入された遺伝子を保有する遺伝子型である個体がどのような花色を有するか、CIELab表色系CIELabcolorcoordinatesystemなどを用いて花色を正確に測色数値化し、遺伝させることが十分ではなかったという問題点もある。もし花卉の花色発現に関係する複対立遺伝子の遺伝子型を構造的に解明し、これらの遺伝子型と花色との相関が明らかになれば、それらの遺伝子型を判定した上で遺伝する個体がどのような花色を当代及び/又は後代へ発現するか容易に予測することができ、そのような遺伝子型は、花色を予測又は検定するための遺伝子指標マーカーとして利用できるかもしれない。これによって、複対立遺伝子型について開花を迎えずに早期に判定するだけで、遺伝する当代及び/又は後代の花色をCIELab表色系などの座標軸上の値として容易に予測することができ、開花を迎えずに早期に花色を正確に知ることができると考えられる。また、もし新規トランスポゾン及び/又はレトロトランスポゾンが挿入された遺伝子を保有する遺伝子型と、花色との関係が明確になれば、CIELab表色系などの座標軸上の値としてより正確に花色を育種する技術として使用できるかもしれない。本発明者らは、花色発現に関連する5つの複対立遺伝子型の遺伝子構造を明らかにし、それらの構造と当代及び/又は後代に遺伝される花色遺伝を明らかにし、また、CIELab表色系などを用いて花色を正確に測色数値化した上で、その色素遺伝子型と花色遺伝との関係を明らかにし、花卉の新花色作出について実用的な花色改変法と、及び/又は、花卉の開花を迎えずに早期に遺伝子を検定した上で、複対立遺伝子型を帰属し、遺伝する花色を知ることができる実用的な花色予測法を提供することを目的とする。本発明者らは、上記の課題を解決するため、花色発現に関連する5つの複対立遺伝子型、すなわちHT、HF、HD、HZ、HOのいずれか又はその組み合わせからなる遺伝子型を有する花卉品種を用いて、CIELab表色系CIELabcolorcoordinatesystemによる花色を測定数値化し、また、それらの色素表現型を分析し、それらの遺伝子型を帰属した。さらに、帰属された5つの複対立遺伝子型、HT、HF、HD、HZ、HOのそれぞれについて、フラボノイド3’、5’-ヒドロキシラーゼF3’、5’-H遺伝子の構造を明らかにし、その結果、5つの複対立遺伝子型HT、HF、HD、HZ、HOは3つのフラボノイド3’、5’-ヒドロキシラーゼF3’、5’-H遺伝子群に分類できることを今回見出した。発明の概要本発明は、要約すると、以下の特徴を有する。1図4に示す経路式のフラボノイド生合成の色素前駆物質のB環の水酸化に関わるフラボノイド3,5’水酸化酵素を含む花卉の酵素反応系の花粉親配偶子及び種子親配偶子由来の複対立遺伝子HT、HF、HZ、HD及びHOの組み合わせを、該複対立遺伝子に対応するフラボノイド3’、5’-ヒドロキシラーゼ遺伝子に基づいて開花前の花卉組織から決定し、遺伝子型HXHXPg/pgCy/cyDp/dpについて花粉親配偶子及び種子親配偶子間の複対立遺伝子の組み合わせと花色との相関に基づいて開花前の花卉の花色を予測する方法であって、ここで、複対立遺伝子HTが、該フラボノイド生合成の前駆物質でのB環の水酸化に関して3’位の水酸化を制御し、ペラルゴニジンPgnとシアニジンCynの生合成に関与する遺伝子であり、複対立遺伝子HFが該フラボノイド生合成の前駆物質でのB環の水酸化に関して5’位の水酸化を制御し、ペラルゴニジンPgnの生合成に関与する遺伝子であり、複対立遺伝子HD又はHZが、該フラボノイド生合成の前駆物質でのB環の水酸化に関して3’,5’位の水酸化を制御し、デルフィニジンDpnの生合成に関与する遺伝子であり、並びに、複対立遺伝子HOが該フラボノイド生合成の前駆物質でのB環の水酸化に関して3’、5’位の水酸化を制御し、デルフィニジンDpnの生合成に関与する遺伝子である、前記方法。2複対立遺伝子の組み合わせが、電気泳動により決定される、1に記載の方法。3複対立遺伝子HT又はHFが、配列番号1の塩基配列、その相補的配列、又はそれらの配列と80以上の同一性を有する若しくはそれらの配列とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列を含むDNAである、1又は2に記載の方法。4複対立遺伝子HZ又はHDが、配列番号2の塩基配列、その相補的配列、又はそれらの配列と80以上の同一性を有する若しくはそれらの配列とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列を含むDNAである、1又は2に記載の方法。5複対立遺伝子HOが、配列番号3の塩基配列、その相補的配列、又はそれらの配列と80以上の同一性を有する若しくはそれらの配列とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列を含むDNAである、1又は2に記載の方法。6花卉が、双子葉植物又は単子葉植物から選択される、1~5のいずれかに記載の方法。7花卉がトルコギキョウである、6に記載の方法。8複対立遺伝子HT又はHF由来の配列番号1の塩基配列、その相補的配列、又はそれらの配列と80以上の同一性を有する若しくはそれらの配列とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列を含むDNA又はその15塩基以上の断片。9複対立遺伝子HZ又はHD由来の配列番号2の塩基配列又はそれらの配列と80以上の同一性を有する若しくはそれらの配列とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列を含むDNAの第1エクソン配列中に、配列番号4のレトロトランスポゾンの塩基配列又はそれらの配列と60以上の同一性を有する若しくはそれらの配列とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列が挿入されている、8に記載のDNA又はその15塩基以上の断片。10配列番号4の塩基配列又はそれらの配列と60以上の同一性を有する若しくはそれらの配列とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列を含むレトロトランスポゾン又はその15塩基以上の断片。11複対立遺伝子HO由来の配列番号3の塩基配列、その相補的配列、又はそれらの配列と80以上の同一性を有する若しくはそれらの配列とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列を含むDNA又はその15塩基以上の断片。12開花前の花卉の花色を予測するためのキットであって、下記のa~cのDNA又はその断片:a複対立遺伝子HT又はHF由来の配列番号1の塩基配列、その相補的配列、又はそれらの配列と80以上の同一性を有する若しくはそれらの配列とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列を含むDNA、或いは該DNAの15塩基以上の断片、b複対立遺伝子HZ又はHD由来の配列番号2の塩基配列、その相補的配列、又はそれらの配列と80以上の同一性を有する若しくはそれらの配列とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列を含むDNA、或いは該DNAの15塩基以上の断片、並びに、c複対立遺伝子HO由来の配列番号3の塩基配列、その相補的配列、又はそれらの配列と80以上の同一性を有する若しくはそれらの配列とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列を含むDNA、或いは該DNAの15塩基以上の断片、の少なくとも1つをプローブ又はプライマーとして含む、前記キット。13プローブが標識されている、12に記載のキット。14前記複対立遺伝子の組み合わせと花色との相関を示す早見表をさらに含む、12又は13に記載のキット。15花卉の複対立遺伝子HZ、HD又はその両方のエクソン部分に、配列番号4の塩基配列又はそれらの配列と60以上の同一性を有する若しくはそれらの配列とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列を含むレトロトランスポゾンを挿入することを含む、ただし複対立遺伝子HD又はHZが、フラボノイド生合成の前駆物質でのB環の水酸化に関して3’,5’位の水酸化を制御し、デルフィニジンDpnの生合成に関与する遺伝子である、花卉の花色を改変する方法。16エクソンが第1エクソンである、15に記載の方法。17花色の改変が、複対立遺伝子HD又はHZの機能を失い、新たに複対立遺伝子HT又はHFの機能を獲得することによって生じる、ただし複対立遺伝子HTが、フラボノイド生合成の前駆物質でのB環の水酸化に関して3’位の水酸化を制御し、ペラルゴニジンPgnとシアニジンCynの生合成に関与する遺伝子であり、複対立遺伝子HFがフラボノイド生合成の前駆物質でのB環の水酸化に関して、ペラルゴニジンPgnの生合成に関与する遺伝子である、15又は16に記載の方法。18花卉が、双子葉植物又は単子葉植物から選択される、15~17のいずれかに記載の方法。19図4に示す経路式のフラボノイド生合成の色素前駆物質のB環の水酸化に関わるフラボノイド3,5’水酸化酵素を含む花卉の酵素反応系の花粉親配偶子及び種子親配偶子由来の複対立遺伝子HT、HF、HZ、HD及びHOの組み合わせと花色との相関を示す早見表であって、ここで、複対立遺伝子HTが、該フラボノイド生合成の前駆物質でのB環の水酸化に関して3’位の水酸化を制御し、ペラルゴニジンPgnとシアニジンCynの生合成に関与する遺伝子であり、複対立遺伝子HFが該フラボノイド生合成の前駆物質でのB環の水酸化に関して5’位の水酸化を制御し、ペラルゴニジンPgnの生合成に関与する遺伝子であり、複対立遺伝子HD又はHZが、該フラボノイド生合成の前駆物質でのB環の水酸化に関して3’,5’位の水酸化を制御し、デルフィニジンDpnの生合成に関与する遺伝子であり、並びに、複対立遺伝子HOが該フラボノイド生合成の前駆物質でのB環の水酸化に関して3’、5’位の水酸化を制御し、デルフィニジンDpnの生合成に関与する遺伝子である、前記早見表。20下記のいずれかである、19に記載の早見表。定義本明細書中で使用される用語は、以下の定義を有する。複対立遺伝子に対応するフラボノイド3’、5’-ヒドロキシラーゼ遺伝子とは、花卉のフラボノイド3、5’水酸化に関与し、複対立遺伝子遺伝子座に存在する複数の遺伝的な因子の一部を構成する要素を意味する。花卉とは、フラボノイドを含む花を有する被子植物、特に双子葉植物及び単子葉植物、をいう。花色遺伝型交配法とは、フラボノイドのアントシアニジン色素、すなわちペラルゴニジンPgn、シアニジンCyn及びデルフィニジンDpn、に関する遺伝型育種法において、フラボノイド生合成における前駆物質のB環の水酸化に関わる5つの複対立遺伝子を任意に組み合わせることによって自由に花色を作製するための方法をいう。花粉親配偶子とは、雄性配偶子をいう。一方、種子親配偶子とは、雌性配偶子をいう。同一性とは、対象の複対立遺伝子のDNA配列との配列比較alignmentを、ギャップを導入して又はギャップを導入しないで行い、対象のDNA配列の全塩基数に対する同一塩基数の百分率をいう。配列比較は、通常、BLAST、FASTAなどのアルゴリズムを利用して行うことができる例えば、S.F.Altschulら,J.Mol.Biol.215:403-4101990;W.R.PearsonD.S.Lipman,Proc.Natl.Acad.Sci.USA85:2444-24481988。ストリンジェントな条件とは、対象の複対立遺伝子のDNA配列に対してハイブリダイズすることができる条件であって、例えば30~50°Cで、3~5×SSC、0.1~1SDS中で1~15時間のハイブリダイゼーション、その後の、例えば0.1~2×SSC、0.1~1SDS中、室温~70°Cでの洗浄からなる条件をいう。このような条件下で対象の複対立遺伝子のDNA配列にハイブリダイズすることができるDNAは、例えば該複対立遺伝子の変異体又はホモログである。ここで、ホモログは、対象植物とは異なる植物又は植物品種の同族の複対立遺伝子を指す。本発明により、花色発現に関連する5つの複対立遺伝子の構造が解明された結果、それらの遺伝子型を判定した上で遺伝する個体がどのような花色を当代及び/又は後代へ発現するか容易に予測することができるし、また、開花を迎えずに早期に花色を予測することができる。これによって、花粉親配偶子及び種子親配偶子間の複対立遺伝子の組み合わせと花色との関係を示す早見表の作成が可能となり、これは花色の予測のために便利に利用できる。さらにまた、本発明により、新規レトロトランスポゾンが見出され、これが挿入された遺伝子を保有する遺伝子型が解明された結果、5つの複対立遺伝子と花色との関係が明確となり、複対立遺伝子へのレトロトランスポゾン挿入を介して花色の改変、特に赤色への改変が可能となった。複対立遺伝子特許文献8に一部記載されるように、本発明者らは、花色遺伝型が、図4に示す経路式Iのフラボノイド生合成に関係することを見出した。図4中、HT、HF、HZ、HD及びHOは、フラボノイド生合成の前駆物質でのB環の水酸化に関与する複対立遺伝子を表わし、ここで、複対立遺伝子HTが、該前駆物質でのB環の水酸化に関して3’位の水酸化を制御し、ペラルゴニジンPgnとシアニジンCynの生合成に関与する遺伝子であり、複対立遺伝子HFが該前駆物質でのB環の水酸化に関して5’位の水酸化を制御し、ペラルゴニジンPgnの生合成に関与する遺伝子であり、複対立遺伝子HD又はHZが、該前駆物質でのB環の水酸化に関して3’,5’位の水酸化を制御し、デルフィニジンDpnの生合成に関与する遺伝子であり、並びに、複対立遺伝子HOが該前駆物質でのB環の水酸化に関して3’、5’位の水酸化を制御し、デルフィニジンDpnの生合成に関与する遺伝子である。さらにまた、図4中、花卉の花色発現に関わる主要アントシアニジン色素のペラルゴニジンPgn、シアニジンCyn、デルフィニジンDpnの遺伝について、Pgn、Cyn、Dpn色素の遺伝子座をそれぞれPg/pg、Cy/cy、Dp/dpとして示した。Pgn、Cyn、Dpnの生合成に関与するジヒドロフラボノールリダクターゼDFRおよびアントシアニジンシンターゼASの酵素系の遺伝が、それぞれPg/pg、Cy/cy、Dp/dpの遺伝子によって制御されている。本発明によれば、上記5つの複対立遺伝子HT、HF、HZ、HD及びHOは、該複対立遺伝子によって制御される3つのフラボノイド3、5’ヒドロキシラーゼF3’、5’H遺伝子群に基づいて、HTとHF、HZとHD及びHOに分類できる。フラボノイド色素前駆体のB環の水酸化に関与するフラボノイド3-ヒドロキシラーゼF3Hとフラボノイド3、5-ヒドロキシラーゼF3、5Hの酵素反応系の遺伝子型を、上記のとおり、HT、HF、HD、HZ、HOの5つの複対立遺伝子で示し、Pg/pgの記号のうち2つを選択しすなわち、PgPg、Pgpg、pgpgの組合せ記号のうち1つを選択し、Cy/cyの記号のうち2つを選択しすなわち、Cycy、Cycy、cycyの組合せ記号のうち1つを選択し、Dp/dpの記号のうち2つを選択しすなわち、DpDp、Dpdp、dpdpの組合せ記号のうち1つを選択し、また、HT、HF、HD、HZ、HOの記号のうち2つを選択しすなわち、HTHT、HTHF、HTHD、HTHZ、HTHO、HFHF、HDHF、HZHF、HOHF、HDHD、HDHZ、HDHO、HZHO、HOHOの組合せ記号のうち1つを選択し、花色を決める遺伝子型をD/dE/eHXHXPg/pgCy/cyDp/dpとして表わすことができる。本発明の3種の遺伝子は、花卉の組織、例えば根、葉、茎、種子などの植物体のあらゆる部分からDNAを抽出し、プライマーを使用するポリメラーゼ連鎖反応PCRを行い、増幅産物を単離し、その後、配列決定によって得ることができる。すなわち、3種の遺伝子の翻訳領域を夾み、互いに向かい合う15~30bpのオリゴヌクレオチドをプライマーとし、花卉の組織より抽出したDNAを鋳型としてPCRを行う。このPCRによって、プライマーにはさまれる領域のDNA断片が増幅される。このようにして、複対立遺伝子HDとHZが3115bpの塩基配列配列番号2を含むこと、複対立遺伝子HOが2498bpの塩基配列配列番号3を含むこと、複対立遺伝子HT又はHFが8525bpの塩基配列配列番号1を含み、この配列中に配列番号4の塩基配列を含むレトロトランスポゾン様因子rTeg1retrotransposonEustomagrandiflorum1が含まれることが判明した図2参照。具体的には、複対立遺伝子型HD又はHZのフラボノイド3’、5’-ヒドロキシラーゼF3’、5’-H遺伝子の構造は、配列番号2に示す3115bpの塩基配列であり、986bpと1000bpからなる2つのエクソンの間に、1129bpのイントロンを保有した構造である。また、複対立遺伝子型HOのF3’、5’-H遺伝子の構造は、配列番号3に示す2498bpの塩基配列であり、986bpと1000bpからなる2つのエクソンの間に、512bpのイントロンを保有した構造である。さらにまた、複対立遺伝子型HT又はHFのF3’、5’-H遺伝子の構造は、配列番号1に示す8525bpの塩基配列であり、991bpと1000bpからなる2つのエクソンの間に1129bpのイントロンを保有し、さらに991bpの第1エクソンの491bpと500bpとの間に5405bpのレトロトランスポゾンが挿入された構造である。花色の予測法本発明によれば、開花前の花卉の花色を予測する方法が提供される。この方法は、花粉親及び種子親配偶子間の上記複対立遺伝子HT、HF、HZ、HD及びHOの組み合わせを、該複対立遺伝子のフラボノイド3’、5’-ヒドロキシラーゼ遺伝子に基づいて開花前の花卉組織から決定し、遺伝子型HXHXPg/pgCy/cyDp/dpについて花粉親及び種子親配偶子間の複対立遺伝子の組み合わせと花色との相関に基づいて、開花前の花卉の花色を予測することを含む。本発明において、花卉とは、フラボノイドflavonoidsを含む花、果実、種子、葉、すなわち、フラボノイドを含む花弁、萼片、苞、花被、果皮、種皮、葉柄などを有する顕花植物門Anthophytaの被子植物門Angiospermaeであり、被子植物門には双子葉植物綱Dicotyledoneae及び単子葉植物綱Monocotyledoneaeが含まれる。双子葉植物綱の合弁花亜網Sympetalaeの花卉として、限定されるものではないが、例えば、キキョウ目Campanulataeキク科Compositae、スティリディウム科Stylidiaceae、クサトベラ科Goodeniaceae、キキョウ科Campanulacae、ウリ目Cucurbitalesウリ科Cucurbitaceae、アカネ目Rubialesマツムシソウ科Dipsacaceae、オミナエシ科Valerianaceae、スイカズラ科Caprifoliaceae、アカネ科Rubiaceae、シソ目Tubifloraeキツネノマゴ科Acanthaceae、タヌキモ科Lentibulariaceae、イワタバコ科Gesneriaceae、ツノゴマ科Martyniaceae、ゴマ科Pedaliaceae、ノウゼンカズラ科Bignoniaceae、ゴマノハグサ科Scrophulariaceae、ナス科Solanaceae、シソ科Labiatae、クマツヅラ科Verbenaceae、ムラサキ科Boraginaceae、ハゼリソウ科Hydrophyllaceae、ハナシノブ科Polemoniaceae、ヒルガオ科Convolvulaceae、モクセイ目Contortaeガガイモ科Asclepiadaceae、キョウチクトウ科Apocynaceae、リンドウ科Gentianaceae、フジウツギ科Loganiaceae、モクセイ科Oleaceae、イソマツ目Plumbaginalesイソマツ科Plumbaginaceae、サクラソウ目Primulalesサクラソウ科Primulaceae、ヤブコウジ科Myrsinaceae、ツツジ目Ericalesツツジ科Ericaceae、イチヤクソウ科Pyrolaceae、イワウメ目Diapensialesイワウメ科Diapensiaceaeが挙げられる。双子葉植物綱の離弁花亜網Archichlamydeaeの花卉として、例えば、限定されるものではないが、テンニンカ目Myrtifloraeアカバナ科Onagraceae、ノボタン科Melastomataceae、フトモモ科Myrtacear、シクンシ科Combretaceae、ザクロ科Punicaceae、ミソハギ科Lythraceae、グミ科Elaegnaceae、ジンチョウゲ科Thymelaeaceae、ツバキ目Parietalesシュウカイドウ科Begoniaceae、トケイソウ科Passifloraceae、ハンニチバナ科Cistaceae、スミレ科Violaceae、ツバキ科Camelliaceae、アオイ目Malvalesアオイ科Malvacaeae、ホルトノキ科Elaeocarpaceae、クロウメモドキ目Rhamnalesブドウ科Vitaceae、クロウメモドキ科Rhamnaceae、ムクロジ目Sapindalesツリフネソウ科Balsaminaceae、トチノキ科Hippocastanaceae、カエデ科Aceraceae、ニシキギ科Celastraceae、モチノキ科Aquifoliaceae、ウルシ科Anacardiaceae、フウロソウ目Geranialesトウダイグサ科Euphorbiaceae、ヒメハギ科Polygalaceae、ミカン科Rutaceae、アマ科Linaceae、フウロソウ科Geraniaceae、カタバミ科Oxalidaceae、バラ目Rosalesマメ科Leguminosae、バラ科Rosaceae、マンサク科Hamamelidaceae、トベラ科Pittosporaceae、ユキノシタ科Saxifragaceae、ベンケイソウ科Crassulaceae、サラセニア目Sarracenialesサラセニア科Sarraceniaceae、ウツボカズラ科Nepenthaceae、モウセンゴケ科Droseraceae、ケシ目Papaveralesアブラナ科Brassicaseae、フウチョウソウ科Capparidaceae、ケシ科Papaveraceae、キンポウゲ目Ranunculalesクスノキ科Lauraceae、メギ科Berberidaceae、キンポウゲ科Ranunculaceae、アケビ科Lardizabalaceae、スイレン科Nymphaeaceae、バンレイシ科Annonaceae、モクレン科Magnoliaceae、アカザ目Centrospermaeナデシコ科Caryophyllaceae、オシロイバナ科Nyctaginaceae、タデ目Polygonalesタデ科Polygonaceae、イラクサ目Urticalesクワ科Moraceae、ヤマモモ目Myricalesヤマモモ科Myricaceaeが挙げられる。単子葉植物網の花卉として、限定されるものではないが、例えば、ラン目Orchidalesラン科Orchidaceae、ショウガ目Scitamineaカンナ科Cannaceae、ショウガ科Zingiberaceae、バショウ科Musaceae、ユリ目Liliifloraeアヤメ科Iridaceae、ヒガンバナ科Amaryllidaceae、ユリ科Liliaceae、ツユクサ目Commelinalesミズアオイ科Pontederiaceae、ツユクサ科Commelinaceae、パイナップル科Bromeliaceae、サトイモ目Aralesサトイモ科Araceaeが挙げられる。本発明において、上記5つの複対立遺伝子型の組み合わせは、3種類のフラボノイド3’、5’-ヒドロキシラーゼ遺伝子に基づいて開花前の花卉組織から決定される。上記3種類のフラボノイド3’、5’-ヒドロキシラーゼ遺伝子を得るために、レトロトランスポゾン様因子rTeg1の挿入部位を挟み込む、5’→3’向きの塩基配列に対応した第1のプライマーと、3’→5’向きの塩基配列に対応した第2のプライマーを用いてPCRを行うことができる。そのためのプライマーは、例えば以下のものである。第1のプライマー:5’-CTCAGACCTCTGTTACCTCAGTCAG-3’配列番号5第2のプライマー:3’-AGAAACTGAACTCTCATCC-5’配列番号6増幅されたDNAは、電気泳動で分離することができ、電気泳動ゲル上のバンドとして検出される。ゲル上のバンドは、ゲルから単離可能で、単離されたDNA断片はサイクルシークエンシング法によるプライマーウォーキングなど、通常行われている塩基配列決定の方法に従って、全塩基配列を決定できる。DNA断片の塩基配列が決定されたとき、その断片にトランスポゾン様DNAが挿入されていれば、そのトランスポゾンの配列と挿入位置も決定される。例えば、トルコギキョウの品種あすかの紅から抽出したDNAを鋳型として用い、上記に示されたオリゴヌクレオチドをプライマーとして用い、PCRを行って、PCR産物をアガロースゲルによる電気泳動を行った場合には、約8kbpのDNA断片が得られる。このDNA断片をアガロースゲルから抽出して、サイクルシークエンシング法によるプライマーウォーキングによって全塩基配列を決定すると、配列番号1に示す8525bpの塩基配列からなるトランスポゾン様DNAが含まれることが判明した。例えばトルコギキョウの品種ロイヤルバイオレットから抽出したDNAを用い、上記に示されたオリゴヌクレオチドをプライマーとして用い、PCRを行って、PCR産物をアガロースゲルによる電気泳動を行った場合には約2.5kbpのDNA断片が得られる。このDNA断片をアガロースゲルから抽出して、サイクルシークエンシング法によるプライマーウォーキングによって全塩基配列を決定すると、配列番号3に示す2498bpの塩基配列からなるDNAが含まれることが判明した。例えば、トルコギキョウの品種メロウラベンダーから抽出した抽出したDNAを用い、上記に示されたオリゴヌクレオチドをプライマーとして用い、PCRを行って、PCR産物をアガロースゲルによる電気泳動を行った場合には約3kbpのDNA断片が得られる。このDNA断片をアガロースゲルから抽出して、サイクルシークエンシング法によるプライマーウォーキングによって全塩基配列を決定すると、配列番号2に示す3115bpの塩基配列からなるDNAが含まれることが判明した。したがって、本発明によれば、上記複対立遺伝子型を決める3種類のフラボノイド3’、5’-ヒドロキシラーゼ遺伝子は、以下のものである。1複対立遺伝子型HTを表わす、該フラボノイド生合成の前駆物質でのB環の水酸化に関して3’位の水酸化を制御しペラルゴニジンPgnとシアニジンCynの生合成に関与するDNAであって、配列番号1の塩基配列、その相補的配列、又はそれらの配列と80以上の同一性を有する若しくはそれらの配列とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列を含むDNA、或いは、複対立遺伝子型HFを表わす、該フラボノイド生合成の前駆物質でのB環の水酸化に関して5’位の水酸化を制御し、ペラルゴニジンPgnの生合成に関与するDNAであって、配列番号1の塩基配列、その相補的配列、又はそれらの配列と80以上の同一性を有する若しくはそれらの配列とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列を含むDNA。2複対立遺伝子HD又はHZを表わす、該フラボノイド生合成の前駆物質でのB環の水酸化に関して3’,5’位の水酸化を制御し、デルフィニジンDpnの生合成に関与するDNAであって、配列番号2の塩基配列、その相補的配列、又はそれらの配列と80以上の同一性を有する若しくはそれらの配列とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列を含むDNA。3複対立遺伝子型HOを表わす、該フラボノイド生合成の前駆物質でのB環の水酸化に関して3’、5’位の水酸化を制御し、デルフィニジンDpnの生合成に関与するDNAであって、配列番号3の塩基配列、その相補的配列、又はそれらの配列と80以上の同一性を有する若しくはそれらの配列とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列を含むDNA。上記1~3のDNAにおいて、該DNAには、上記のフラボノイド生合成に関与する活性を有するという条件で、配列番号1、配列番号2又は配列番号3の塩基配列或いはその相補的配列と通常60以上、好ましくは70以上、75以上、より好ましくは80以上、85以上、さらに好ましくは90以上、95以上又は98以上の同一性を有するDNAも包含される。また、そのようなDNAには、配列番号1、配列番号2又は配列番号3の塩基配列或いはその相補的配列とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列を含むDNAも包含される。ストリンジェントな条件は、上記定義のとおりであり、すなわち、以下のものに特に限定されないが、例えば30~50°Cで、3~5×SSC、0.1~1SDS中で1~15時間のハイブリダイゼーション、その後の、例えば0.1~2×SSC、0.1~1SDS中、室温~70°Cでの洗浄からなる条件をいう。ここで、1×SSCとは、150mM塩化ナトリウム及び15mMクエン酸ナトリウムを含む水溶液pH7.2である。ストリンジェントな条件の他の例は、例えばSambrookら,MolecularCloning,ALaboratoryMannual,ColdSpringHarborLaboratoryPress,1989に記載されており、その開示を本発明でも利用しうるものとする。上記の80以上の同一性を有するDNA、或いは、ストリンジェントな条件下でハイブリダイズするDNAは、配列番号1、配列番号2又は配列番号3の塩基配列或いはその相補的配列の突然変異体、それとは異なる植物又は植物品種のホモログなどを含む。本発明の方法では、開花前の花卉の組織、例えば葉、根、茎などの任意の部位からDNAを抽出し、必要であればPCR法により該DNAを増幅し、DNAをサイズ分離する。DNAのサイズは、例えばトルコギキョウの場合8525bp配列番号1、3115bp配列番号2、2498bp配列番号3であり、これらは、後述の実施例6又は図3ではそれぞれEf3、Ef2、Ef1と称される。これらの特定のDNAサイズは、あくまでも例示であり、もし植物の種類が異なれば、それらのサイズも相違するかもしれないが、本発明では、配列番号1、配列番号2又は配列番号3の塩基配列或いはその相補的配列と一次構造及び活性の点で類似する限り、いかなるDNAサイズも許容しうる。DNAの抽出は、花卉の組織を微塵切りにし、これを適当なバッファー中でホジナイズしたのち、フェノール法などの公知のDNA抽出法にて、全DNAを抽出する。このためには、市販のDNA抽出キットを使用してもよく、そのようなキットの例は、PlantGenomicsDNAMiniキットバイオジーン社などである。全DNAから対象のDNAをサイズ分離するために、例えば電気泳動、サザンハイブリダイゼーションなどを利用することができる。電気泳動の場合、ゲルは、通常、アガロースゲルが好ましい。対象DNAを電気泳動で検出する場合、対象DNAを予めPCR法で増幅することが好ましい。PCRのためのプライマーは、配列番号1、2及び3の5’末端側配列及び3’末端側配列はいずれも同じ配列を有するため、同一の正方向プライマーと逆方向プライマーを設計、作製し、使用することができる。植物種によっては、配列番号1、2及び3の塩基配列から設計されたプライマー配列が、例えば5’末端又は3’末端の配列の相違のために、使用できない場合もあるかもしれないが、そのような場合には、植物種の組織からDNAを抽出し、配列番号1、2及び3の塩基配列との同一性を考慮して作製したランダムなプライマーを用いてPCR増幅し、増幅されたDNAについて塩基配列を決定することを通して、適切なプライマー配列を決めることができる。或いは、GenBankなどの配列データバンクを介して、対象DNA配列に関して種々の植物種の関連配列を検索し、得られた配列に基づいてプライマー配列を決めることができる。プライマーのサイズは、例えば15~50塩基、好ましくは17~25塩基である。PCR条件は、目的の対象DNAが増幅可能な限り限定されないが、例えば94~95°Cで10秒~1分間の変性、50~65°Cで10秒~1分間のアニーリング、72°Cで30秒~10分の伸長反応を1サイクルとし、20~50サイクル反応を行うことを含む。PCRに際しては、耐熱性逆転写酵素例えばTaqポリメラーゼなど、dNTPここで、NはA,T,G及びCである、Mg2を含有するバッファーなどが用いられる。対象DNAをサザンハイブリダイゼーションで検出する場合、植物の組織から抽出された全DNAを、上記のように電気泳動にかけてサイズ分離したのち、アルカリ処理し、ナイロンなどのメンブランに転写し、標識プローブを用いて対象DNAを検出する。プローブは、下記の1~3のDNA又はその断片の少なくとも1つである。1複対立遺伝子HT又はHF由来の配列番号1の塩基配列、その相補的配列、又はそれらの配列と80以上の同一性を有する若しくはそれらの配列とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列を含むDNA、或いは該DNAの15塩基以上の断片。2複対立遺伝子HZ又はHD由来の配列番号2の塩基配列、その相補的配列、又はそれらの配列と80以上の同一性を有する若しくはそれらの配列とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列を含むDNA、或いは該DNAの15塩基以上の断片。3複対立遺伝子HO由来の配列番号3の塩基配列、その相補的配列、又はそれらの配列と80以上の同一性を有する若しくはそれらの配列とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列を含むDNA、或いは該DNAの15塩基以上の断片。プローブのサイズは、15塩基以上であり、例えば20~200塩基、25~100塩基、50~80塩基などである。また、プローブの標識は、例えば蛍光ラベル化剤、放射性同位元素によって行われる。本発明においては、上記の手法によって、該アントシアニジン類のフラボノイド生合成の前駆化合物のB環の水酸化に関与する5つの複対立遺伝子型のフラボノイド3’、5’-ヒドロキシラーゼ遺伝子を知ることが可能である。複対立遺伝子型がHTHTの場合、B環の水酸基が1個と2個を有する4種の前駆物質ナリンゲニンnaringenin、エリオディクチオールeriodictyol、ジヒドロケンフェロールdihydrokaempferol、ジヒドロクエルセチンdihydroquercetinを生成し、HFHFの場合、B環の水酸基を1個有する2種の前駆物質ナリンゲニンnaringenin、ジヒドロケンフェロールdihydrokaempferolを生成し、HTHFの場合、B環B-ringの水酸基が1~3個有する6種の前駆物質ナリンゲニンnaringenin、エリオディクチオールeriodictyol、ペンタヒドロキシフラバノンpentahydroxyflavanone、ジヒドロケンフェロールdihydrokaempferol、ジヒドロクエルセチンdihydroquercetin、ジヒドロミリセチンdihydromyricetinを生成するが、これらのフラボノイド3’、5’-水酸化酵素F3’、5’-H遺伝子として、配列番号1に示す8525bpの塩基配列の遺伝子が検出される。複対立遺伝子型がHDHDの場合、B環の水酸基を3個有する2種の前駆物質ペンタヒドロキシフラバノンpentahydroxyflavanone、ジヒドロミリセチンdihydromyricetinを生成し、HDHZ、HZHZの場合、B環の水酸基が3個有する2種の前駆物質ペンタヒドロキシフラバノンpentahydroxyflavanone、ジヒドロミリセチンdihydromyricetinを生成するが、これらのフラボノイド3’、5’-水酸化酵素F3’、5’-H遺伝子として、配列番号2に示す3115bpの塩基配列の遺伝子が検出される。複対立遺伝子型がHOHOの場合、B環B-ringの水酸基が1~3個有する6種の前駆物質ナリンゲニンnaringenin、エリオディクチオールeriodictyol、ペンタヒドロキシフラバノンpentahydroxyflavanone、ジヒドロケンフェロールdihydrokaempferol、ジヒドロクエルセチンdihydroquercetin、ジヒドロミリセチンdihydromyricetinを生成するが、このフラボノイド3’、5’-水酸化酵素F3’、5’-H遺伝子として、配列番号3に示す2498bpの塩基配列の遺伝子が検出される。すなわち、配列番号1に示す8525bpの塩基配列の遺伝子は、HTの対立遺伝子alleleの制御に関係し、従って、ナリンゲニンnaringeninからエリオディクティオールeriodictyol並びにジヒドロケンフェロールdihydrokaempferolからジヒドロクエルセチンdihydroquercetinへの生化学的変換biosynthetictransformationの制御に関係する。また、8525bpの塩基配列の遺伝子は、HFの対立遺伝子の制御にも関係し、従って、エリオディクティオールeriodictyolからペンタヒドロキシフラバノンpentahydroxyflavanone並びにジヒドロクエルセチンdihydroquercetinからジヒドロミリセチンdihydromyricetinへの生化学的変換の制御に関係する。また、配列番号2に示す3115bpの塩基配列の遺伝子は、HD及び/又はHZの対立遺伝子の制御に関係し、従って、ナリンゲニンnaringeninからペンタヒドロキシフラバノンpentahydroxyflavanone並びにジヒドロケンフェロールdihydrokaempferolからジヒドロミリセチンdihydromyricetinへの生化学的変換の制御に関係する。さらにまた、配列番号3に示す2498bpの塩基配列の遺伝子は、HOの対立遺伝子の制御に関係し、従って、ナリンゲニンnaringeninからエリオディクティオールeriodictyolとペンタヒドロキシフラバノンpentahydroxyflavanone並びにジヒドロケンフェロールdihydrokaempherolからジヒドロクエルセチンdihydroquercetinとジヒドロミリセチンdihydromyricetinへの全ての生化学的変換の制御に関係する。なお、上記の前駆物質の構造を含むPgn、Cyn及びDpnの生合成経路に関しては、村上孝夫、天然物の構造と化学、155~185頁、廣川書店、1984年に記載されている。本発明において、例えば、トルコギキョウ花弁の色素遺伝子型pigmentgenotypeについて、HTHTPg-CyCyDpDpの色素遺伝子型でPgnCyn型の色素表現型PgnCyn-pigmentphenotypeの場合、HTHFPg-CyCyDpDpの遺伝子型でPgnCynDpn型の表現型の場合、及びHFHFPg-CyCyDpDpの遺伝子型でPgn型の表現型の場合、いずれのフラボノイド3’、5’-水酸化酵素F3’、5’-H遺伝子も、配列番号1に示す8525bpの塩基配列の遺伝子である。色素遺伝子型の表記において、-は、その一つ前に表記された遺伝子遺伝子及び/又は遺伝子型に優性的に支配されていることを示し、いずれの遺伝子でも用いることができることを意味する。例えば、HZHZ--CyCyDpDp、HDHZ--CyCyDpDp、HDHD--CyCyDpDpの色素遺伝子型でDpn型の色素表現型の場合、いずれのフラボノイド3’、5’-水酸化酵素F3’、5’-H遺伝子も、配列番号2に示す3115bpの塩基配列の遺伝子である。色素遺伝子型の表記において、--は、いずれの遺伝子遺伝子及び/又は遺伝子型も用いることができることを意味する。例えば、HOHOpgpgCyCyDpDpの色素遺伝子型でCynDpn型の色素表現型、及び、HOHOPg-CyCyDpDpの色素遺伝子型でPgnCynDpn型の色素表現型の場合、いずれのフラボノイド3’、5’-水酸化酵素F3’、5’-H遺伝子も、配列番号3に示す2498bpの塩基配列の遺伝子である。本発明では、ヘテロ型の遺伝子型をフラボノイド3’、5’-水酸化酵素F3’、5’-H遺伝子より同定できる。例えば、HTHOPg-CyCyDpDpの色素遺伝子型でPgnCynDpn型の色素表現型の場合、フラボノイド3’、5’-水酸化酵素F3’、5’-H遺伝子は、配列番号1に示す8525bpの塩基配列の遺伝子と配列番号3に示す2498bpの塩基配列の遺伝子とが検出される。例えば、HTHDPg-CyCyDpDpの色素遺伝子型でPgnCynDpn型の色素表現型の場合、フラボノイド3’、5’-水酸化酵素F3’、5’-H遺伝子は、配列番号1に示す8525bpの塩基配列の遺伝子と配列番号2に示す3115bpの塩基配列の遺伝子が検出される。アントシアニジン類では、その構造中のB環の水酸化が異なることでその呈色が決定される。すなわち、B環の4’位に水酸基が1個有するペラルゴニジンPgnはオレンジ色~朱赤色を呈し、B環の3’、4’位に水酸基が2個有するシアニジンCynは赤色~深紅色を呈し、B環の3’、4’、5’位に水酸基が3個有するデルフィニジンDpnは赤紫~紫色を呈し、これらが共存することによって様々な花色を発現する本多利雄ら、現代化学、25~32頁、東京化学同人、1998年。本発明において、例えば、トルコギキョウのフラボノイド3’、5’-水酸化酵素F3’、5’-H遺伝子が、配列番号1に示す8525bpの塩基配列の遺伝子であれば、赤紫色、赤色、深赤色、紫赤色、淡赤色、ピンク色、白赤色、白色の花を得ることができる。ここで、白色はアントシアニジンを全く含まないことに起因する。トルコギキョウのフラボノイド3’、5’-水酸化酵素F3’、5’-H遺伝子が、配列番号2に示す3115bpの塩基配列の遺伝子であれば、淡紫色、紫赤色、紫色、青紫色の花を得ることができる。トルコギキョウのフラボノイド3’、5’-水酸化酵素F3’、5’-H遺伝子が、配列番号3に示す2498bpの塩基配列の遺伝子であれば、赤紫色、赤色、紫赤色の花を得ることができる。トルコギキョウ以外の花卉として、例えば、スイートピーsweetpea、Lathyrusodoratus花弁の色素遺伝子型について、HTHTPg-CyCyDpDpでPgnCyn型PgnCyn表現型を得ることができる。HTHFpgpgCyCyDpDp、HTHDpgpgCyCyDpDpとHO-pgpgCyCyDpDpでCynDpn型CynDpn表現型を得ることができる。HTHTpgpgCyCyDpDpでCyn型Cyn表現型を得ることができる。HDHF--CyCyDpDpとHDHD--CyCyDpDpでDpn型Dpn表現型を得ることができる。HFHFpgpgCyCyDpDpで白色の花を得ることができる。色素遺伝子型において、-及び--は、上記と同義である。また、Dpn型Dpn表現型の色素表現型にはメチル化アントシアニジンmethylatedanthocyanidinであるマルヴィジンmalvidin、Mvとペチュニジンpetunidin、Ptを含むが、これらは、いずれもDpn型Dpn表現型の色素表現型に包含される。さらに、Cyn型Cyn表現型の色素表現型にはメチル化アントシアニジンであるペオニジンpeonidin、Pnを含むが、これはCyn型Cyn表現型の色素表現型に包含される。さらにまた、例えば、ツツジおよびシャクナゲ花弁の色素遺伝子型について、HTHTpgpgCyCyDpDpでCyn型Cyn表現型を得ることができる。HTHFpgpgCyCyDpDp、HTHOpgpgCyCyDpDp、HOHOpgpgCyCyDpDpでCynDpn型CynDpn表現型を得ることができる。HFHFpgpgCyCyDpDpで白色の花を得ることができる。なお、PgnDpn型PgnDpn表現型は得られない。ツツジ花弁の色素遺伝子型の特徴として、Pgn色素Pgn表現型の生合成に関与するジヒドロフラボノールリダクターゼDFR又はアントシアニジンシンターゼASの発現に関する遺伝子座が劣性のホモ型recessivehomozygotepgpgになっているために、Pgn色素が生成されない。Dpn型Dpn表現型の色素表現型にはメチル化アントシアニジンであるマルヴィジンMvとペチュニジンPtを含むが、これらは、いずれもDpn型Dpn表現型の色素表現型に包含される。さらに、Cyn型Cyn表現型の色素表現型にはメチル化アントシアニジンであるペオニジンPnを含むが、これらはCyn型Cyn表現型の色素表現型に包含される。花卉の花色は、花弁又は萼片、花被、苞、果皮などの有色部分から、50vv酢酸水溶液又は50vv酢酸メタノールmethanolic-aceticacidを用いてアントシアニンanthocyaninを抽出し[酢酸の濃度は10~50でも可能であり、酢酸の代わりに0.5~2規定塩酸を用いてもよい]、これを塩酸加水分解して、アントシアニジンanthocyanidinを含む加水分解物を得て、これを高速液体クロマトグラフィーHPLCなどを用いて各種アントシアニジンを分析することによって測定できる例えばUddinら,JapanSoc.Hort.Sci.,71:40-47,2002。さらに、自殖self-pollinationや交雑を繰り返して得られた後代の遺伝子型について、優性ホモ型dominanthomozygote、優性ヘテロ型dominantheterozygote、劣性ホモ型recessivehomozygoteなどを決定し、花色と色素遺伝子型と3種のフラボノイド3’、5’-水酸化酵素F3’、5’-H遺伝子を同定する。これに基づいて、花粉親配偶子及び種子親配偶子間の複対立遺伝子型の組み合わせと花色との相関を示す早見表を作成することができる例えば、後述実施例76参照。早見表の例として、例えばトルコギギョウの花色を予測するための早見表が挙げられる。花色については、CIELab表色系CIELabcolorcoordinatesystemなどを用いて花色を正確に測色数値化することができる。したがって、花卉の3種のフラボノイド3’、5’-水酸化酵素F3’、5’-H遺伝子を測定し、上記配偶子間で5つの複対立遺伝子型HT、HF、HZ、HD及びHOの組み合わせを決定することによって、上記のような早見表を用いて、開花前の花卉の花色を予測することができる。キットとDNA本発明はさらに、開花前の花卉の花色を予測するためのキットも提供する。キットには、下記の1~3のDNA又はその断片:1複対立遺伝子HT又はHF由来の配列番号1の塩基配列、その相補的配列、又はそれらの配列と80以上の同一性を有する若しくはそれらの配列とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列を含むDNA、或いは該DNAの15塩基以上の断片、2複対立遺伝子HZ又はHD由来の配列番号2の塩基配列、その相補的配列、又はそれらの配列と80以上の同一性を有する若しくはそれらの配列とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列を含むDNA、或いは該DNAの15塩基以上の断片、並びに、3複対立遺伝子HO由来の配列番号3の塩基配列、その相補的配列、又はそれらの配列と80以上の同一性を有する若しくはそれらの配列とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列を含むDNA、或いは該DNAの15塩基以上の断片、の少なくとも1つをプローブ又はプライマーとして含む。プライマーのサイズは、例えば15~50塩基、好ましくは17~25塩基である。プローブのサイズは、15塩基以上であり、例えば20~200塩基、25~100塩基、50~80塩基などである。プローブは、好ましくは、例えば蛍光ラベル化剤、放射性同位元素などのラベル化剤によって標識されている。蛍光ラベル化剤には、例えばローダミン、フルオレサミン、ダンシル、それらの誘導体、Cyダイなどが含まれ、一方、放射性同位元素には、例えば32P、35Sなどが含まれる。本発明のキットには、上記複対立遺伝子型の組み合わせと花色との相関を示す早見表をさらに含むことができる。また、キットには、PCR用の酵素やバッファー、ハイブリダイゼーション用の試薬やバッファーなどをさらに含むことができる。本発明のキットは、プローブを用いてサザンハイブリダイゼーションを行い、複対立遺伝子型の検定や花色の予測が可能である。本発明はさらに、以下のDNA又はその断片を提供する。4複対立遺伝子HT又はHF由来の配列番号1の塩基配列、その相補的配列、又はそれらの配列と80以上の同一性を有する若しくはそれらの配列とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列を含むDNA、或いは15塩基以上のその断片。このDNAは、複対立遺伝子HZ又はHD由来の配列番号2の塩基配列又はそれらの配列と80以上の同一性を有する若しくはそれらの配列とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列を含むDNAの第1エクソン配列中に、配列番号4のレトロトランスポゾンの塩基配列又はそれらの配列と60以上の同一性を有する若しくはそれらの配列とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列が挿入されたDNAである。5配列番号4の塩基配列又はそれらの配列と60以上の同一性を有する若しくはそれらの配列とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列を含むレトロトランスポゾン、或いは15塩基以上のその断片。6複対立遺伝子HZ又はHD由来の配列番号2の塩基配列、その相補的配列、又はそれらの配列と80以上の同一性を有する若しくはそれらの配列とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列を含むDNA、或いは15塩基以上のその断片。7複対立遺伝子HO由来の配列番号3の塩基配列、その相補的配列、又はそれらの配列と80以上の同一性を有する若しくはそれらの配列とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列を含むDNA、或いは15塩基以上のその断片。本発明の上記4~7のDNA又はその断片は、プローブとして用いて蛍光insituハイブリダイゼーションFISHを行うことにより、トルコギキョウなどの花卉の染色体の検出を行うこともまた可能である。また、プローブ及び/又はプライマーとして用いて、種々の植物種から本発明の配列番号1、2又は3の塩基配列を有するDNAに相当するホモログを得ることが可能であるし、また染色体マッピングなどに応用することも可能である。さらにまた、プライマーとして用いてPCRを行うと、ゲノム中より種々のDNA断片が増幅されるが、このような断片は、染色体と同様に扱うことができるので、DNA多型から染色体マッピングが可能であり、従って、そのようなプライマーを用いることで、新たな染色体マーカーや遺伝子マーカーを開発することも可能となる。さらにまた、上記DNAを遺伝子組換えなどの技術に用いることで、人為的な形質改変も可能となる。レトロトランスポゾン本発明者らは、上述したように、配列番号1に示す複対立遺伝子HT又はHFの塩基配列において、その第1エクソン中にレトロトランスポゾンrTeg1;配列番号4を含むことを見出した図2。また、このレトロトランスポゾン配列が挿入される前の配列は複対立遺伝子HD又はHZであることも判明した。本発明のレトロトランスポゾンは、配列番号4の塩基配列と通常60以上、好ましくは70以上、75以上、より好ましくは80以上、85以上、さらに好ましくは90以上、95以上又は98以上の同一性を有する、レトロトランスポゾン活性を有するDNAも包含する。このようなDNAは、トルコギキョウの品種間の突然変異体、リンドウ科の近縁種のホモログなどを包含する。ここで、レトロトランスポゾン活性とは、他の遺伝子に挿入されたとき、その遺伝子の機能を改変する或いは不活性化する活性をいう。本発明のレトロトランスポゾンを他の遺伝子、特に複対立遺伝子HD又はHZに挿入させることによって、その遺伝子の機能を改変することも可能である。例えばフラボノイド3’、5’-水酸化酵素F3’5’H遺伝子にレトロトランスポゾンを挿入することで、紫の花色を赤に改変させることも可能である。すなわち、本発明はさらに、花卉の複対立遺伝子HZ、HD又はその両方のエクソン部分に、配列番号4の塩基配列又はそれらの配列と60以上の同一性を有する若しくはそれらの配列とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列を含むレトロトランスポゾンを挿入することを含む、花卉の花色を改変する方法を提供する。本発明では、上記エクソンは、第1エクソンであることが好ましい。花色の改変は、レトロトランスポゾンの挿入のために、複対立遺伝子HD又はHZの機能が失われ、その代わりに新たに複対立遺伝子HT又はHFの機能が獲得されることによって生じる。本発明で使用可能な花卉には、上に例示したような双子葉植物及び単子葉植物が含まれる。本発明のトランスポゾンによる形質転換は、双子葉植物及び単子葉植物の一般的な形質転換法を用いて行うことができる。ベクターとしては、好ましくは、バイナリーベクター例えば、pBI101、pBI121などが使用される。このベクターには、TDNA領域の左側ボーダーLBと右側ボーダーRBの間に、上記の配列番号4の塩基配列又はそれらの配列と60以上の同一性を有する若しくはそれらの配列とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列を含むレトロトランスポゾン配列が挿入される。ベクターには、さらに細菌での選択用のカナマイシン耐性遺伝子、ネオマイシン耐性遺伝子などの選択マーカー、植物での選択用のネオマイシンホスホトランスフェラーゼIINPTII、ジヒドロ葉酸レダクターゼなどの選択マーカー、カリフラワーモザイクウイルスCaMVプロモーターなどのプロモーターなどを含むことができる。形質転換は、アグロバクテリウム法アセトシリンゴンの使用を含む、パーティクルガン法、マイクロインジェクション法、エレクトロポレーション法などによって行うことができる。アグロバクテリウムの例は、アグロバクテリウムツメファシエンス例えば、EHA105、EHA101などを含む。これによって、レトロトランスポゾン配列は、相同組換えによって植物ゲノムに組み込まれる。形質転換は、カルスや多芽体などに対して実施され、通常の植物培養法を介して植物体にまで再生される。植物の遺伝子工学に関しては、例えば松橋通生ら監訳、ワトソン組換えDNAの分子生物学、第2版、丸善、1994年;島本功ら監修、植物細胞工学シリーズ15、モデル植物の実験プロトコール、遺伝学的手法からゲノム解析まで、秀潤社などの記載を利用することができる。以下、本発明を実施例により具体的に説明するが、本発明の範囲はこれらの実施例によって限定されないものとする。[実施例1]トルコギキョウの葉から複対立遺伝子HT、HF、HZ、HD、HOのF3’、5’-HDNAの確認トルコギキョウの5系統の成葉から、PlantGenomicDNAMiniキットバイオジーン社を使用し、DNAを抽出した。レトロトランスポゾン挿入部位を挟み込む形で下記の2種類のプライマー組を設計した。プライマー組R:GTACTTAAAGGTAGGCAGCTGTGGATACCTCCCTATAGACGAGAAGCC配列番号7プライマー組L:GTACTTAAAGGTAGGCAGCTGTGGCCTCTTGCTGCTATGGTCACTC配列番号8PCRはGeneAmp9700システムABI社を使用して行った。反応液20μl中には10ngDNA、0.5unitsTAKARAEXTaqHSタカラバイオ社、0.2mMdNTPs、2μl10×EXTaqバッファー、0.4μMプライマーが含まれる。PCR条件は、95°Cで10秒間の変性、62°Cで30秒間のアニーリング、72°Cで3分の伸長反応を1サイクルとし、45サイクル反応させた。反応後、1アガロースゲルSニッポンジーン社上の電気泳動によりバンドの確認を行った。その結果を図1に示す。HTとHFは約8kbの同様のバンド、HZとHDは約3kbの同様のバンド、HOは2.5kbのバンドを示すことが分かる図1。図1中、プライマー組Rを用いて検出したバンドが右R、プライマー組Lを用いて検出したバンドが左のバンドLである。[実施例2]トルコギキョウの葉から複対立遺伝子HT及びHFに関わるF3’、5’-HDNAの構造の確認実施例1の結果、花弁にデルフィニジンが存在しない系統では、全ての系統で、レトロトランスポゾンの挿入を示す約8kbのバンドが観察された。これに対して、デルフィニジンが存在する系統では、2~2.5kbのバンドのみが存在する場合と、2~2.5kbのバンドと8kbのバンドの両方が存在する場合があった。これらのバンドの配列はダイレクトシークエンス法によって決定した。具体的には、得られたバンドからQIAEXIIgel-purificationkitsQiagenを使用してDNAを抽出した。抽出された断片DNAはプライマーウォーキング法による塩基配列の決定に供された。シークエンス反応はBigDyeTerminatorVer.3によるサイクルシークエンスを採用した。反応液20μl中には10~100ngDNA、2μlBigDyeTerminatorVer.3プレミックス、1.5μl10×Taqバッファーニッポンジーン社、100ngDNA、3.2pmプライマーが含まれる。サイクルシークエンス反応の条件は、96°Cで10秒間の変性、50°Cで5秒間のアニーリング、60°Cで4分間の伸長反応を1サイクルとし、25サイクル反応させた。反応後、反応産物をエタノール/酢酸ナトリウム沈殿により精製し、鹿児島大学フロンティアサイエンス研究推進センターのDNAシークエンス解析サービスに依頼し、末端から約500bp程度の配列を決定した。決定された配列をもとにプライマーを設計し、再び、サイクルシークエンシングによる配列決定を進め、最終的に全長の配列を決定した。この結果を図2に示す。複対立遺伝子HT及びHFに関わるF3’、5’-HDNAの構造は配列番号1に示す8525bpの塩基配列の遺伝子であることが分かる。また、レトロトランスポゾンの構造は、配列番号4に示す5405bpの塩基配列の遺伝子であることが分かる図2。[実施例3]トルコギキョウの葉から複対立遺伝子HZ及びHDに関わるF3’、5’-HDNAの構造の確認実施例1と同じ方法で、HDをホモで持つ系統からDNAを抽出し、トルコギキョウのフラボノイド3’、5’-水酸化酵素F3’、5’-H遺伝子の翻訳領域全てを挟み込む形でプライマー5’-GGCCGCATTCTTACCAAGAT-3’配列番号9及び5’-TAGAAACATGGACGAACTCC-3’配列番号10のDNA配列を有するオリゴヌクレオチドを設計した。実施例1及び2と同じ方法でPCRを行い、電気泳動のバンドからDNAを抽出し、塩基配列を決定した。この結果を図2に示す。複対立遺伝子HZ及びHDに関わるF3’、5’-HDNAの構造は、配列番号2に示す3115bpの塩基配列の遺伝子であることが分かる図2。[実施例4]トルコギキョウの葉から複対立遺伝子HOに関わるF3’、5’-HDNAの構造の確認実施例3と同じ方法で、HO約をホモで持つ系統からDNAを抽出しPCRを行い、電気泳動のバンドからDNAを抽出し、塩基配列を決定した。この結果を図2に示す。複対立遺伝子HOに関わるF3’、5’-HDNAの構造は、配列番号3に示す2498bpの塩基配列の遺伝子であることが分かる図2。[実施例5]複対立遺伝子HT、HF、HZ、HD、HOのF3’、5’-HDNAが翻訳する蛋白質の構造1複対立遺伝子HT、HFに関わる、配列番号1に示す8525bpの塩基配列のF3’、5’-HDNAが翻訳する蛋白質の構造複対立遺伝子HT、HFに関わる、配列番号1に示す8525bpの塩基配列から予測されるアミノ酸配列の検討を行った結果、下記の2つの蛋白質、一つは136個のアミノ酸配列を有する蛋白質と、もう一つは386個のアミノ酸配列を有する蛋白質の、2種類を翻訳することが分かった。MAVGNGVLLHIAASLMLFFHVQKLVQYLWMNSRRHRLPPGPIGWPVLGALRLLGTMPHVALANMAKKYGPVMYLKVGSCGLAVASTPEAAKAFLKTLDMNFSNRPPNAGATHLAYNAQDMVFADYGPRWKLLRKLC配列番号11;MKNVMFPSNKLSNIHILGGKALQGWEEVRKKELGYMLYAMAESGRHGQPVVVSEMLTYAMANMLGQVMLSKRVFGSQGSESNEFKDMVVELMTVAGYFNIGDFIPSIAWMDLQGIQGGMKRLHKKFDALLTRLLEEHTASAHERKGSPDFLDFVVANGDNSEGERLQTVNIKALLLNMFTAGTDTSSSVIEWALAELLKNPIILRRAQEEMDGVIGRDRRFLEADISKLPYLQAICKEAFRKHPSTPLNLPRIASQACEVNGHYIPKGTRLSVNIWAIGRDPSVWENPNEFNPDRFLERKNAKIDPRGNDFELIPFGAGRRICAGTRLGILLVEYILGTLVHSFVWELPSSVIELNMDESFGLALQKAVPLAAMVTPRLPLHIYSP配列番号122複対立遺伝子HZ、HDに関わる、配列番号2に示す3115bpの塩基配列のF3’、5’-HDNAが翻訳する蛋白質の構造複対立遺伝子HZ、HDに関わる、配列番号2に示す3115bpの塩基配列から予測されるアミノ酸配列の検討を行った結果、下記の510個のアミノ酸配列を有する蛋白質を翻訳することが分かった。この蛋白質のアミノ酸配列構造は、非特許文献7のそれと一致した。MAVGNGVLLHIAASLMLFFHVQKLVQYLWMNSRRHRLPPGPIGWPVLGALRLLGTMPHVALANMAKKYGPVMYLKVGSCGLAVASTPEAAKAFLKTLDMNFSNRPPNAGATHLAYNAQDMVFADYGPRWKLLRKLSNIHILGGKALQGWEEVRKKELGYMLYAMAESGRHGQPVVVSEMLTYAMANMLGQVMLSKRVFGSQGSESNEFKDMVVELMTVAGYFNIGDFIPSIAWMDLQGIQGGMKRLHKKFDALLTRLLEEHTASAHERKGSPDFLDFVVANGDNSEGERLQTVNIKALLLNMFTAGTDTSSSVIEWALAELLKNPIILRRAQEEMDGVIGRDRRFLEADISKLPYLQAICKEAFRKHPSTPLNLPRIASQACEVNGHYIPKGTRLSVNIWAIGRDPSVWENPNEFNPDRFLERKNAKIDPRGNDFELIPFGAGRRICAGTRLGILLVEYILGTLVHSFVWELPSSVIELNMDESFGLALQKAVPLAAMVTPRLPLHIYSP配列番号133複対立遺伝子HOに関わる、配列番号3に示す2498bpの塩基配列のF3’、5’-HDNAが翻訳する蛋白質の構造複対立遺伝子HOに関わる、配列番号3に示す2498bpの塩基配列から予測されるアミノ酸配列の検討を行った結果、下記の510個のアミノ酸配列を有する蛋白質を翻訳することが分かった。MAVGNGVLLHIAASLMLFFHVQKLVQYLWMNSRRHRLPPGPIGWPVLGALPLLGTMPHVALANMAKKYGPVMYLKVGSCGLAVASTPEAAKAFLKTLDMNFSNRPPNAGATHLAYNAQDMVFADYGPRWKLLRKLSNIHILGGKALQGWEEVRKKELGYMLYAMAESGRHGQPVVVSEMLTYAMANMLGQVMLSKRVFGSQGSESNEFKDMVVELMTVAGYFNIGDFIPSIAWMDLQGIQGGMKRLHKKFDALLTRLLEEHTASAHERKGSPDFLDFVVANRDNSEGERLHTVNIKALLLNMFTAGTDTSSSVIEWALAELLKNPIILKRAQEEMDGVIGRDRRFLEADISKLPYLQAICKEAFRKHPSTPLNLPRIASQACEVNGHYIPKGTRLSVNIWAIGRDPSLWENPNEFNPDRFLERKNAKIDPRGNDFELIPFGAGRRICAGTRLGILLVEYILGTLVHSFDWELPSSVIELNMDEPFGLALQKAVPLAAMVTPRLPLHIYCP配列番号144配列番号4に示す5405bpの塩基配列のレトロトランスポゾンDNArTeg1が翻訳する蛋白質の構造配列番号4に示す5405bpの塩基配列から予測されるアミノ酸配列の検討を行った結果、下記の1591個のアミノ酸配列を有する蛋白質を翻訳することが分かった。MSETSPNPQEPKTESSVHTTPGDLALQVAQILKDSLGSTPSQSITLPENLNVAVKLTGNNYSLWSRIIYRAILGRGRQYHLTGTPPPPLPTDPRFSRWEQDDNSVFTWILQNVDASMINNVSRYPTAKALWDGLALTYGSRGDSLQVFDLHRKANNIRQGDDTLEACWNNLQDIWVSIDTLDTNPMKCPEDISLYNQKMQEFRLYQFLTAVSDRFETEKKELLKRTPLPNVEAAFFEFKRAESQAGLIKHGPSEQISSLGIGQGLTVKPATGKGRGKGTDRSMNTIRSNNASSRMDKSNLLCEHCGKKGHSREKCFQIHGYPEWWEGKRITTGQGKTAAARTPGEGVSSNEAQMTGESREEEEQNRENPRAQGNSAAAGMGLGENPSPNPPFKSIFTPHAPHFSVLSPDPLSSSDIIFPSPSSLNFSPPSPQSSHRANMVQHTSEFTDQPHTFPISRLDTHTSPKYPFSPQPPPGLSHHIRVTPSQWIFDCGATDTMTFDPTDLLTQSPPLKSHVETASGDTIPVQASGPITITPDITLQNCLLVPSLSTKLLSISQLTKALDCVVLMYPSFCLLQDIRTQAIIGRGTENGGLYYVDAVVQHGSSNLATGTVTRQIWLWHRRLGHPSFSYLQKLFPTLFSRTLPPLTCDTCLRAKQPRATYRSNNTRVNKVFSLIHSDVWGPSPHSTPCGFKYFVIFVDDCSRMTWLYILRHKSEVATKFVEFYHMIHTQYSSTIQILRTDNGGEYFAGALQQFFRDNGIIHQTTCPDTPEQNGVAERKNRTLLEMTRALMLESSVPRFLWPEAVSTATYLSNRLPTVTLNHQTPLDVLASQTLIPSLLTLPPKVFGCTVFIHISKTHRDKLDPCAEKCVFVGYASTQKGYRCYNPRTRQIHVTLNCVFLETEFFFGTHPRSQGEIATDGYLDWLPNLSWSVADPTRQVVEPACTIAPSDNMDSIPVPTNDIPRENVLQQVNESIHDDTGSPVPFSSPPFVPNTTLDDSLTTSIAIPDPSSELDHTNPCVKEQGRTLPPRKTRGVPPDRYSPTKIARATLYPVSTSRKNLGHAAKAFFTQICSEKIPRTVDEACSQSNWRDAMIMEMDALNKNNTWERCQLPPGKRTVGCRWVFTVKYKADGTIERHKARLVAKGYTQTYGVDYSETFSPVARIDTIRVLFAIAATENWPLHQFDVKNAFLHGTLKEEVFMDPPPGFSKEFLPGQVCKLNRALYGLKQSPRAWFGRFTQAMKKDGYRQSNADHTLFIKRQGSLVTCLIIYVDDMIITGNDANEISRLRDYLFTQFEMKDLGGLKYFLGIEVLRSAEGIYISQRKYILDLLTEVGLLDAKPADTPMVQNHKLDIVQGAASADREQYQRLVGKLIYLSHTRPDIAYAVGVVSQFMHSPQKHHLEAVFRIMRYLKGTPGRGLLFKNNGHLNIEAYTDADWAGSQIDRRSTSGYFTLVGGNVVTWRSKKQKVVALSSAEAEYRGIVKGVSEVLWIRKLLQELGFPVTDPTCLMCDNKASISISENPVQHDRTKHVEIDRHFVKEKIEDGIIALPHVRSEDQLADILTKAVNGRIFEFILRKLNIVDPTIQLEGEC配列番号15[実施例6]トルコギキョウの葉からヘテロ型複対立遺伝子のF3’、5’-HDNAの確認紫とピンク色の花色を有する4系統のトルコギキョウの葉からF3’、5’-HDNAの遺伝子を抽出した。DNAの抽出、PCR、電気泳動は実施例1の方法に従った。PCRのプライマーは実施例1の図1のRのプライマーを用いた。その結果を図3に示す。HT、HD、HOをホモで有する個体ではそれぞれ、HTホモでは配列番号1に示す8525bpの塩基配列、HDホモでは配列番号2に示す3115bpの塩基配列、HOホモでは配列番号3に示す2498bpの塩基配列に対応するそれぞれのバンドEf3、Ef2、Ef1が現れた。HTとHDの複対立遺伝子をヘテロ型で有する系統の電気泳動のバンドは、配列番号1に示す8525bpの塩基配列と、配列番号2に示す3115bpの塩基配列に対応する各バンドEf3とEf2を示し、一方、HTとHOの複対立遺伝子をヘテロ型で有する系統の電気泳動のバンドは、配列番号1に示す8525bpの塩基配列と、配列番号3に示す2498bpの塩基配列に対応する各バンドEf3とEf1を示すことが分かる図3。Mと1Kはマーカーを示す。[実施例7]トルコギキョウの色素表現型、色素遺伝子型の帰属、花色測色とF3’、5’-HDNAバンドの検出1トルコギキョウ市販品種の調査園芸品種‘あすかの舞姫’、‘あずまの粧’、‘キングオブスノー’の品種について、特許文献8に記載の花色遺伝型交配法を用いて、CIELab表色系を用いて花色を測定し、高速液体クロマトグラフィーを用いてアントシアニジンの色素表現型を分析した。また、前記した実施例と同様にフラボノイド3’、5’-水酸化酵素F3’、5’-HDNAバンドを測定した。その結果を表1に示す。覆輪系の‘あすかの舞姫’と‘あずまの粧’は、共に色素表現型がPgnCyn型であったこと、及び、共に配列番号1に示す8525bpの塩基配列に対応するバンドEf3を検出したことから、色素遺伝子型がddEeHTHTPg-CyCyDpDpであることが分かる。‘あすかの舞姫’と‘あずまの粧’は、共に赤色の花色を示した。また、覆輪系の‘あすかの舞姫は、明度が35.1と比較的暗く、彩度は63.1と大変鮮やかな花色を有する。また、色素角は1.5度と赤色方向の色であった。‘あずまの粧は、明度が65.3と明るく、彩度は35.3と鮮やかな花色である。また、色素角は-1.0度と赤色方向の色であった。八重系の‘キングオブスノー’の品種2について、色素表現型がPgn型であったこと、及び、配列番号1に示す8525bpの塩基配列に対応するバンドEf3を検出したことから、色素遺伝子型がDdeeHFHFPg-CyCyDpDpであることが分かる。一方、八重系の‘キングオブスノー’の品種9及び11については、色素表現型がDpn型であったこと、及び、配列番号2に示す3115bpの塩基配列に対応するバンドEf2を検出したことから、色素遺伝子型がDdeeHDHDPg-CyCyDpDpであることが分かる。また、八重系の‘キングオブスノー’の品種10については、色素表現型がDpn型であったこと、及び、配列番号2に示す3115bpの塩基配列と配列番号1に示す8525bpの塩基配列に対応するバンドEf2とEf3を同時に検出したことから、色素遺伝子型がDdeeHDHFPg-CyCyDpDpであることが分かる。‘キングオブスノーは、明度が88~92の範囲であって大変明るく、彩度は4~10の範囲でありほぼ白色の花色を有する。また、色素角は93~106度の範囲であって、黄色方向の色であった、肉眼では大変薄いクリーム色の花色であった。このように、従来では、八重系の‘キングオブスノー’の品種9~11の品種群で、花色遺伝型交配法により、ヘテロ型かホモ型か見分けることができなかったが、DNAバンドを検出することによって、複対立遺伝子型について、品種9及び11はHDHDのホモ型、品種10はHDHFのヘテロ型であることを見分けることが可能である。これら4種の‘キングオブスノー’の品種は、色素の蓄積が少なかったことからほとんどの品種がクリーム色の白色を示した。2トルコギキョウ市販品種の自殖後代S1の調査園芸品種‘あすかのそよ風ASY17系統’、‘アクロポリスホワイトAW3系統’、‘キャンディーオーキッドCAO24系統’、‘パピオンローズピンクPRP5系統’の品種を自殖し、後代S1について、特許文献8に記載の花色遺伝型交配法を用いて、CIELab表色系を用いて花色を測定し、高速液体クロマトグラフィーを用いてアントシアニジンの色素表現型を分析した。また、前記の実施例と同様にフラボノイド3’、5’-水酸化酵素F3’、5’-HDNAバンドを測定した。その結果を表2に示す。‘あすかのそよ風’の自殖後代S1のASY17-13系統はEf2とEf3の二つのバンドを検出し赤紫色を示し、ASY17-22系統はEf3のバンド赤色を検出した。この結果、‘あすかのそよ風’の色素遺伝子型はddeeHTHDPg-CyCyDpDpであることが分かる。‘あすかのそよ風’の自殖後代S1のASY17-13系統は、大変鮮やかで85.2、赤紫色の花色-21.7であった。一方、ASY17-22系統は、やや鮮やかで40.3、赤色の花色-1.3であった。‘アクロポリスホワイト’の自殖後代S1は、花色の分離がAW3-8系統と同様であり、Ef2のバンドを検出したことから、‘アクロポリスホワイト’の色素遺伝子型はddE-HDHD--CyCyDpDpであることが分かる。‘アクロポリスホワイト’の品種は色素蓄積が少ないことから、クリーム色の白色を示した。‘アクロポリスホワイト’の自殖後代S1のAW3-8系統は、CIELab測定の結果、大変明るく92.5、黄色方向の花色107.0を示した。‘キャンディーオーキッド’の自殖後代S1は花色が分離したことから、その3種のCAO24系統を分析した。その結果、CAO24-5クリーム色の白色を示したとCAO24-6赤色花はEf3のバンドを検出し、一方CAO24-20紫赤色花はEf1のバンドを検出したことから、‘キャンディーオーキッド’の色素遺伝子型はddeeHTHOPg-CyCyDpDpであることが分かる。‘キャンディーオーキッド’の自殖後代S1は花色が分離したことから、その3種のCAO24系統を分析した。CIELab測定の結果、CAO24-5は黄色方向の色104.0で、大変明るい色90.6を有し、CAO24-6は赤色方向の色-3.5で、やや鮮やかな色23.1を有し、CAO24-20はやや鮮やかな色30.1であり、赤紫色方向の色-27.1であった。‘パピオンローズピンク’の自殖後代S1のは花色が分離したことからその3種のPRP5系統を分析した。その結果、PRP5-2赤色花とPRP5-15赤色花はEf3のバンドを検出し、一方PRP5-1赤紫色花はEf1のバンドを検出したことから、‘キャンディーオーキッド’の色素遺伝子型はddeeHTHTPg-CyCyDpDpであることが分かる。‘パピオンローズピンク’のPRP5-2とPRP5-15は、明るさは明るく61.3,55.6、鮮やかさはやや鮮やか39.7,49.0であり、両者赤色方向の花色-3.2,-5.6であった。、一方、PRP5-1の明るさと鮮やかさ58.4、44.6は、前2者と同様であったが、色相は赤紫色方向の色-14.7を示した。3トルコギキョウ野生型交雑種の調査トルコギキョウ野生型交雑種:Eustomagrandiflorumアリゾナ系統AZ3Dp7、Eustomagrandiflorumテキサス系統TX34の自殖後代S2~S3について、特許文献8に記載の花色遺伝型交配法を用いて、CIELab表色系を用いて花色を測定し、高速液体クロマトグラフィーを用いてアントシアニジンの色素表現型を分析した。また、前記した実施例と同様にフラボノイド3’、5’-水酸化酵素F3’、5’-HDNAバンドを測定した。その結果を表3に示す。Eustomagrandiflorumアリゾナ系統AZ3Dp7-6の花色は紫赤色であり、Ef2のバンドを検出した。色素表現型がDpn型であったことから、Eustomagrandiflorumアリゾナ系統AZ3Dp7-6の色素遺伝子型はddeeHDHD--CyCyDpDpであることが分かる。アリゾナ系統AZ3Dp7-6の花色は非常に暗く26.7、鮮やかさはとても鮮やか82.7で、色相は赤紫色方向の花色-23.1であった。Eustomagrandiflorumテキサス系統TX34の5系統は、すべて赤色の花であり、Ef3のバンドであった。色素表現型がPgnCyn型であったことから、Eustomagrandiflorumテキサス系統TX34の5系統の色素遺伝子型はすべてddeeHTHTPgPgCyCyDpDpであることが分かる。テキサス系統TX34の5系統は、明るさは概ね67~85の値の範囲で明るく、鮮やかさは14~38の値の範囲であまり鮮やかではないかやや鮮やかな範囲であり、色相は-7~4度の範囲であり、従って、5系統の色相は概ね赤色方向の色であった。4トルコギキョウ野生型交雑種の自殖後代S1の調査トルコギキョウ野生型交雑種:Eustomagrandiflorumテキサス系統TX61の自殖後代S2について、特許文献8に記載の花色遺伝型交配法を用いて、CIELab表色系を用いて花色を測定し、高速液体クロマトグラフィーを用いてアントシアニジンの色素表現型を分析した。また、前記した実施例と同様にフラボノイド3’、5’-水酸化酵素F3’、5’-HDNAバンドを測定した。その結果を表4に示す。TX61-2は、紫赤色の花色であり、Ef1のバンドであった。色素表現型がCynDpn型であったことから、TX61-2の色素遺伝子型はddeeHOHOpgpgCyCyDpDpであることが分かる。TX61-1は、紫赤色の花色であり、Ef1とEf3の2つのバンドを検出した。色素表現型がCynDpn型であったことから、TX61-1の色素遺伝子型はddeeHOHTpgpgCyCyDpDpであることが分かる。TX61-8及びTX61-11は、赤紫色の花色であり、Ef1とEf3の2つのバンドを検出した。色素表現型がPgnCynDpn型であったことから、TX61-8及びTX61-11の色素遺伝子型はddeeHOHTPg-CyCyDpDpであることが分かる。TX61-3、TX61-5、TX61-6、TX61-9、TX61-15の5系統は、いずれも赤色の花色であり、Ef3のバンドであった。色素表現型がCynDpn型であったことから、TX61-2の色素遺伝子型はddeeHOHOpgpgCyCyDpDpであることが分かる。TX61の系統では、複対立遺伝子型がHOを保有するものは概ね紫色から紫赤色の色相角hを示し-23度~-34度の値、複対立遺伝子型がHTのホモ型になっているものは、概ね赤色の色相角-1度~4度の値を示した。5トルコギキョウ市販品種の自殖後代S3の調査園芸品種‘ロイヤルバイオレットRV10CR41系統’、‘あすかの舞姫AM1A系統’、‘あずまの粧AY2A9系統’を自殖し、後代S3について、特許文献8に記載の花色遺伝型交配法を用いて、CIELab表色系を用いて花色を測定し、高速液体クロマトグラフィーを用いてアントシアニジンの色素表現型を分析した。また、前記した実施例と同様にフラボノイド3’、5’-水酸化酵素F3’、5’-HDNAバンドを測定した。その結果を表5に示す。‘ロイヤルバイオレット’のRV10CR41の2系統は、赤紫hが-23.5度~紫赤色hが-29.7度の花色であり、いずれもEf2のバンドであった。色素表現型がDpn型であったことから、RV10CR41の2系統の色素遺伝子型はddeeHDHD--CyCyDpDpであることが分かる。‘あすかの舞姫’のAM1Aの3系統は、いずれも赤色hが-2.2~2.8度の範囲の花色であり、Ef3のバンドであった。色素表現型がPgnCyn型であったことから、AM1Aの3系統の色素遺伝子型はddE-HTHTPg-CyCyDpDpであることが分かる。‘あずまの粧’のAY2A9の2系統は、いずれも赤色hが-1.3と-4.3度の花色であり、Ef3のバンドであった。色素表現型がPgnCyn型であったことから、AY2A9-12及びAY2A9-19の2系統の色素遺伝子型はそれぞれ、ddeeHTHTPg-CyCyDpDp及びddE-HTHTPg-CyCyDpDpであることが分かる。6早見表の作成トルコギキョウを例にとりながら、各複対立遺伝子の組み合わせから花色とフラボノイド3’、5’-水酸化酵素F3’、5’-H遺伝子に対応する3つのバンド、Ef1、Ef2、Ef3を知ることのできる早見表を、表6及び表7に示す。行には花粉親の配偶子を示し、列には種子親の配偶子を示す。表6は、Pg/pg、Cy/cy及びDp/dpで示される遺伝子座がPgPgCyCyDpDp又はPgpgCyCyDpDpで表される場合の組み合わせ表であり、表7は、Pg/pg、Cy/cy及びDp/dpで示される遺伝子座がpgpgCyCyDpDpで表される場合の組み合わせ表である。例えば、一つの複対立遺伝子HTともう一つの複対立遺伝子HDが受精し、その組み合わせがHTHDとなった場合は、表6からその色素表現型はPgnCynDpnであり、その花色は紫赤色であり、したがって、フラボノイド3’、5’-水酸化酵素F3’、5’-H遺伝子に対応するバンドは、Ef2とEf3の2つであることをこの早見表より速やかに知ることができる。一方、フラボノイド3’、5’-水酸化酵素F3’、5’-H遺伝子に対応するバンドがEf2とEf3の2つで、花色が紫色で、その色素表現型がDpn型である場合、複対立遺伝子型の組み合わせが、HFHD又はHDHFのいずれかであることをこの早見表より速やかに知ることができる。"