生体内の抗体生産細胞が生産するIgE抗体の生産を抑制する物質をスクリーニングする抗アレルギー因子のスクリーニング方法であって、細胞株に発現するNOV由来タンパク質との関係により、前記IgE抗体の生産を抑制することによる抗アレルギー効果を発揮する被検物質をスクリーニングする判定ステップを含む抗アレルギー因子のスクリーニング方法。前記判定ステップにおいて、前記NOV由来タンパク質との結合親和性を比較して、高い被検物質をスクリーニングする、請求項1記載の抗アレルギー因子のスクリーニング方法。前記細胞株は、ヒトTリンパ球性白血病細胞株であり、前記NOV由来タンパク質は、遺伝子NOV由来のタンパク質である、請求項2記載の抗アレルギー因子のスクリーニング方法。前記判定ステップにおいて、前記細胞株の培養液中に前記被検物質を添加した場合に、前記細胞株が発現するNOV由来タンパク質の発現量を抑制する被検物質をスクリーニングする、請求項1記載の抗アレルギー因子のスクリーニング方法。前記細胞株は、ヒトT細胞性白血病細胞株Molt-4である、請求項4記載の抗アレルギー因子のスクリーニング方法。しかしながら、前述の細胞を用いるアレルギー発症モデル検出系は、生体から分離した免疫に関わる血液細胞を利用することから、検定の都度、健常人のドナー提供者から同意を得て血液細胞を提供してもらう必要があった。そのため、結果として検定に使用できる細胞数に限りがあるという問題があった。また、細胞の提供者による個人差が最終的な検定の結果に影響を与え、試験結果として得られたデータの再現が困難であるなどの問題があった。ゆえに、本発明は、利用できる細胞数も簡単に確保でき、かつ、個人差などの影響を受けない被検物質の抗アレルギー効果の再現性も期待できることを可能にする抗アレルギー因子のスクリーニング方法を提供することを目的とする。本願発明者達は、血液由来の初代細胞を用いた抗アレルギースクリーニング系としてのアレルギー発症モデル検出系のメカニズムを詳細に検討し続けてきた。提供された血液細胞により、IgE抗体を生産するBリンパ球や免疫制御作用を有するTリンパ球などの混合細胞培養が実施された。この混合細胞培養において、Bリンパ球のIgE抗体の生産に伴って、Tリンパ球の細胞膜上にNOV遺伝子由来のタンパク質が発現していることが分かった。NOV遺伝子由来タンパク質は、細胞内で細胞活動の情報伝達物質であり、細胞の増殖信号および細胞の接着に関わる信号シグナル伝達物質に関与しているとされている。しかしながら、その働きは未だ研究中であり、報告はほとんどない。本願発明者達は、被検物質の抗アレルギー効果抗アレルギー因子に伴い、NOV由来タンパク質の発現量が変化することを見いだした。本願発明者達は、アレルギー発症モデル検出系の細胞群に、発症のない細胞群と比較してNOV遺伝子発現が5倍以上増大することを発見した。すなわち、本願発明者達は、Tリンパ球の細胞膜上のNOV由来のタンパク質の発現量が減少すると、それに伴いアレルギーの引き金物質であるIgE抗体の生産量が抑制されたことを見いだした。さらに、本願発明者達は、このNOV由来タンパク質が、抗アレルギー物質を被検物質にすると、被検物質に特異的に結合する性質を有することを併せて見いだした。言い換えれば、IgE抗体の生産量を抑制して、抗アレルギー効果を発揮する因子の探索には、IgE抗体量を調べる方法だけでなく、以下のスクリーニングを行えばよいことが判明した。したがって、本発明の第一の観点は、生体内の抗体生産細胞が生産するIgE抗体の生産を抑制する物質をスクリーニングする抗アレルギー因子のスクリーニング方法であって、細胞株に発現するNOV由来タンパク質との関係により、IgE抗体の生産を抑制することによる抗アレルギー効果を発揮する被検物質をスクリーニングする判定ステップを含むものである。具体的には、IgE抗体の産生を抑制する成分を探索するためのアッセイ方法であって、NOV由来タンパク質をプローブ探索針として、このNOV由来タンパク質と結合する被検物質が抗アレルギー物質であることを特徴とするスクリーニング手法である。抗アレルギー物質としてスクリーニングするものとして成功した具体例には、例えばイチゴ由来のグリセロアルデヒド3リン酸脱水素酵素というタンパク質が挙げられる。本願発明者達は、タンパク質性の抗アレルギー物質は検知可能だと判断している。そして、理論的には、NOVタンパク質と結合すればよいので、分子量が100以上あるような物質であれば、基本的にはスクリーニング可能と判断している。なお、本願発明者によって、タンパク質ではないが、現時点では、お茶の抗アレルギー物質と言われているカテキン類も、本スクリーニング系で調べることができることが分かっている。本発明の第二の観点は、抗アレルギー効果のある物質をスクリーニングする具体的な新規方法として、試薬であるNOVタンパク質と直接結合する能力の高い物質が該当物質であるとする方法である。すなわち、判定ステップにおいて、NOV由来タンパク質との結合親和性を比較して、高い被検物質をスクリーニングするものである。発明者らは、細胞株が、ヒトTリンパ球性白血病細胞株であり、NOV由来タンパク質が、遺伝子NOV由来のタンパク質である場合について、実験により具体的に示した。本発明の第三の観点は、もう一つのスクリーニング新規方法として、NOVタンパク質が細胞膜上に発現しているTリンパ球を利用して、このTリンパ球の細胞培養液中に被検物質を添加した際、この細胞膜上のNOVタンパク質発現量が減少すれば、被検物質は抗アレルギー物質であるとする方法である。すなわち、判定ステップにおいて、前記細胞株の培養液中に前記被検物質を添加した場合に、前記細胞株が発現するNOV由来タンパク質の発現量を抑制する被検物質をスクリーニングするものである。発明者らは、細胞株が、ヒトT細胞性白血病細胞株Molt-4である場合について、実験により具体的に示した。Molt-4は無限増殖能を持つ細胞株であるため、継代培養することが可能になり、培養環境を一定に保つことができる。このことから、結果として、利用できる細胞数も簡単に安定して確保でき、かつ、個人差などの影響を受けない被検物質の抗アレルギー効果の再現性も期待できる。本願発明で使用しうる被検物質は、食品素材、食品の組成物、化学物質等である。これらの調製は、水溶性の物質の場合、水や生理食塩水、培養培地などを用いて行われ、非水溶性の場合、エタノールやメタノール、ジメチルスルホキシドなどの溶媒を用いて溶解させて行わればよい。本願の発明によれば、今までに無い抗アレルギー因子のスクリーニング方法が得られる。そして、スクリーニングに利用できる細胞数も簡単に確保でき、かつ、個人差などの影響を受けない被検物質の抗アレルギー効果の再現性も期待できることを可能にする抗アレルギー因子のスクリーニング方法が得られる。具体的には、細胞株による再現性の高い抗アレルギー因子の探索が可能になり、さらに、生化学的にNOVタンパク質と被検物質との結合能を調べることにより、極めて迅速且つ簡便に抗アレルギー物質をスクリーニングできることも可能になった。本発明は、IgE生産抑制効果によって抗アレルギー能を有する物質のアッセイ方法に関する。より具体的には、本発明では、抗体生産細胞のIgE生産量の抑制に連動して作用するNOV由来タンパク質が被検物質と結合するため、その結合能を、例えば生体分子間相互作用装置などで検出する。このことにより、その結合親和性が高い物質をIgE産生抑制物質、ひいては、抗アレルギー物質として評価可能なアッセイ方法が実現できる。これは、NOV由来タンパク質をプローブとして生体分子間相互作用装置であるBIACOREセンサーチップCM5に固定化し、このチップに被検物質を作用させ、その結合を検出することで実現する。ここで、NOV由来タンパク質を細胞膜上に発現するヒトT細胞性白血病細胞株Molt-4がある。このヒトT細胞性白血病細胞株Molt-4の培養は、一般的な動物細胞培養方法で用いる牛胎児血清を増殖因子として10程度含むRPMI1640培地などの基本合成培地を用いることにより可能である。なお、培養培地はこれに限らず、動物細胞培養培地であれば、市販の無血清培地なども利用できる。このMolt-4細胞の培養では、適切な細胞密度に調製した細胞懸濁液に、被検物質を培養液中に5以内の終濃度になるよう添加することが行われる。数日間培養後、Molt-4細胞を回収して、細胞膜上のNOVタンパク質に結合する特異抗体を利用して蛍光色素でマーキングし、その蛍光量の増減を数値化して、蛍光量が減少したものを抗アレルギー物質とする。なお、NOVタンパク質と被検試料との結合能の評価は、生体分子間相互作用装置を使用しているが、必ずしもこれに限らない。すなわち、タンパク質同士の結合の評価には、酵素抗体法やウェスタンブロッティング法などの生化学的評価法があり、これを利用することも可能である。以下に本発明の実施例を例示するが、本発明は以下の実施例に限定されるものではない。[リンパ球の分離]ヒト末梢リンパ球を取得するために、健常者の末梢血を密度勾配遠心法により血液分離した。健常人から末梢血をヘパリン入り真空管に採集し、あらかじめ15ml遠心管に分注しておいた4mlの血液分離剤Ficoll;GEHealthcareの上に液面を乱さないように5mlの末梢血を重層し、400×g、30minの条件で遠心した。そして、最上層の血漿の層を取得し、-24°Cで保存した。次に、血漿層とFicoll層の間にあるリンパ球を回収後、基本合成培地ERDFKyokutoSeiyakuで洗浄し、400×g、5minの条件で遠心、洗浄を3回繰り返した。取得したリンパ球は、-85°Cで凍結保存し、解凍後はリンパ球をERDF培地で洗浄して使用した。[生体外アレルギー発症モデル細胞培養系]5ウシ胎児血清及び10ヒト血漿を含むERDF培地中に、生体外に取り出した2.5×106cellsmlのヒト末梢血リンパ球と免疫賦活剤としてムラミルジペプチドを10mgml、インターロイキン-2、-4、-6を10ngml、さらにスギ花粉抗原を100ngmlの終濃度で加え、生体外アレルギー発症モデル培養系とした。添加した免疫賦活剤の主な働きは、MDPによる抗原への免疫応答を高めるアジュバンド活性、IL-2によるT細胞の増殖分化の促進、IL-4によるIgEクラススイッチ誘導、IL-6によるB細胞の分化誘導である。これらの免疫賦活剤とCryj1を加えたヒト末梢血リンパ球を96穴プレートに各200ml分注し、37°Cの5CO2インキュベータにて10日間培養してIgE抗体産生を誘導した。なお、この培養系に含まれるヒト血漿とヒト末梢血リンパ球は同一個体のものを使用した。[NOV由来タンパク質発現細胞とIgE抗体生産抑制効果との相関]細胞の膜上に存在する分子を蛍光色素で標識することにより、定量的に解析可能なフローサイトメーターを用いて、細胞膜上のNOV由来タンパク質の発現確認を行なった。生体外アレルギー発症モデル細胞培養系でIgE抗体の生産を抑制する効果、すなわち、抗アレルギー効果を有する被検物質を添加して10日間培養した。GoatantiNOVIgGRD社AF1640とDonkeyantigoatIg’sFITCSantaCruzBiotechnology社SC3853を用いてモデル培養系の細胞を蛍光抗体法による標識を行った。そして、細胞膜上のNOV分子の相対量を測定した。図1は、NOV由来タンパク質発現細胞の発現量とIgE抗体生産抑制効果との相関を示したグラフである。図1Aの対照実験と比較して、図1Bの抗アレルギー物質を添加した方が、グラフのピークが左にずれていることから、発現量が減少していることが分かる。図2は、図1に示した場合に用いた被検物質のIgE抗体生産量を示したグラフである。図2に示されているように、抗アレルギー効果を有する被検物質の入った培養系の細胞のみに、NOV由来タンパク質の発現が抑制されたことが示されている。[NOV由来タンパク質を細胞膜上に発現している細胞の同定]現在、NOV由来タンパク質を発現している細胞に関する報告がない。したがって、数種のヒト培養細胞株を用いて細胞内でのNOV遺伝子の発現を調べることで、どの細胞に発現しているかを同定した。使用した細胞株はヒトBリンパ球系細胞株SK7291、ヒトTリンパ球系細胞株MOLT-4、ヒトBリンパ球系細胞株DND39を用いた。これらの細胞からRNAを抽出後、cDNAを合成し、リアルタイムPCRを行った。ARNAの抽出ISOGEN日本ジーン社31102501を用いて培養細胞1×107cellsを破砕し、これに0.2mlのクロロホルム和光純薬社03802606を加え、15秒間激しく震盪し室温で5分間静置させた後、12K×g、4°Cで15分間遠心した。遠心後、水層を回収し、0.5mlのイソプロパノール和光純薬社16821675を加えて室温で10分間静置した。その後、12K×g、4°Cで10分間遠心して上澄み液を取り除き、70のエタノールを加えた。続いて、12K×g、4°Cで5分間再び遠心し、上澄み液を捨て、5分間風乾した。これにRNA濃度5μg9μlになるようにddH2Oを加え、RNA試料とした。BcDNAの合成単離したRNAからcDNAを合成するために、ThermoScriptTMRTPCRSystemInvitrogen11146016を用いた。RandomHexamer1μl、RNA9μl、10mMdNTPMix2μlをそれぞれ混和し、65°Cで5分間インキュベートした。その後、5×cDNASynthsisBuffer4μl、0.1MDTT1μl、RNaseOUTTM40Uμl1μl、DEPCtreatedwater1μl、ThermoScriptTMRT15unitsμl1μlをそれぞれに加え、混和した。その後、25°Cで10分間、50°Cで50分間、85°Cで5分間反応させ、cDNAを合成した。その後、RNaseH1μlを加え、37°Cで20分間インキュベートし、残存RNAを分解した。CリアルタイムPCRNOVcDNAを鋳型として、cDNA1μl、ForwardPrimer1μl、ReversePrimer1μl、iQTMSYBR登録商標GreenSupermixBIORAD社170888212.5μl、DEPCtreatedwater9.5μlを混和し、NOV遺伝子のリアルタイムPCRを行なった。また、内部標準としてβactinを用いた。この際のPCR条件は、95°Cで3分間酵素を活性化し、95°Cで30秒、60°Cで30秒、72°Cで30秒を、40サイクルで実施した。用いたプライマーは下記の配列である。NOVForwardprimer5’TGGTCCCTCATAGCCCTCAG3’配列番号:1Reverseprimer5’CCCTGCTAATATGCTGTTTCTGC3’配列番号:2βactinForwardprimer5’GACTTCGAGCAAGAGATG3’配列番号:3Reverseprimer5’GCCAGACAGCACTGTGTT3’配列番号:4図3は、ヒト培養細胞株を用いて細胞内でのNOV遺伝子の発現比較したグラフである。その結果、図3に示すように、MOLT-4細胞株にNOV遺伝子が多く発現していることが分かった。このことから、NOV由来のタンパク質は、ヒトTリンパ球系細胞株に発現していた。抗アレルギー効果の検出方法であるIgE抗体の生産抑制と本願発明で用いるTリンパ球細胞膜上のNOV由来タンパク質発現量の減少との間には相関関係があり、さらに、無限増殖能を有するMolt-4細胞株を用いて、NOV由来タンパク質発現量を検討することで、新規の抗アレルギー因子探索手法が確立できた。[NOV由来タンパク質と抗アレルギー因子の結合能の評価]NOV由来タンパク質と抗アレルギー因子との結合能を評価するため、分子同士の結合を動力学的に測定可能な生体分子間相互作用装置BIACOREを用いて測定した。すなわち、NOV由来タンパク質RD社1640NVをBIACOREセンサーチップCM5BIACORE社BR100012に固定化し、抗アレルギー効果が認められる物質と抗アレルギー効果が認められない物質を120秒間流路に流して、NOV由来タンパク質との結合親和性をグラフ化した。図4は、NOV由来タンパク質と抗アレルギー因子との結合能の比較したグラフである。図4に示すように、抗アレルギー因子は、対照実験と比較して高い結合能を示すグラフの変化が記録されている。その結果、NOV由来タンパク質と抗アレルギー物質とは、結合親和性が高く、逆に、抗アレルギー物質でないものは、結合親和性は極めて低いことが分かった。抗アレルギー因子探索に、NOVタンパク質そのものを用いて、被検物質との結合能を測定することで新規に抗アレルギー因子を探索可能であることが分かった。