透過性容器、及び前記容器の内部に固定化された、生物膜形成抑制微生物を含むことを特徴とする生物膜形成抑制微生物固定化容器。前記透過性容器は、中空型の多孔性容器であることを特徴とする請求項1に記載の生物膜形成抑制微生物固定化容器。前記中空型の多孔性容器は、中空型のメンブレンからなることを特徴とする請求項2に記載の生物膜形成抑制微生物固定化容器。前記中空型の多孔性容器の長手方向の一方の末端は密封され、他方の末端には微生物流出を遮断する多孔性部材及び外部大気と連通させる導管をさらに含むことを特徴とする請求項2に記載の生物膜形成抑制微生物固定化容器。前記透過性容器は、水中曝気によって流動性を有する流動状担体であることを特徴とする請求項1に記載の生物膜形成抑制微生物固定化容器。前記流動状担体は、ハイドロゲルを含むことを特徴とする請求項5に記載の生物膜形成抑制微生物固定化容器。前記流動状担体は、アルジネイト、PVA、ポリエチレングリコール及びポリウレタン群から選択される少なくとも1種を含むことを特徴とする請求項5に記載の生物膜形成抑制微生物固定化容器。前記流動状担体は、内部の化学的架橋結合を介して3次元網状構造を有することを特徴とする請求項5に記載の生物膜形成抑制微生物固定化容器。前記流動状担体は、球形からなることを特徴とする請求項5に記載の生物膜形成抑制微生物固定化容器。前記生物膜形成抑制微生物は、生物膜形成抑制酵素を生産することができる遺伝子再組合微生物又は天然微生物であることを特徴とする請求項1又は5に記載の生物膜形成抑制微生物固定化容器。前記生物膜形成抑制微生物は、定足数感知抑制酵素を生産することができることを特徴とする請求項10に記載の生物膜形成抑制微生物固定化容器。前記定足数感知抑制酵素は、ラクトナーゼ又はアシラーゼであることを特徴とする請求項11に記載の生物膜形成抑制微生物固定化容器。被処理水を収容する反応槽、水処理用分離膜モジュール及び前記反応槽内部に配置された請求項1ないし12のいずれか一つに記載の生物膜形成抑制微生物固定化容器を含む分離膜水処理装置。本発明の目的は、水処理用分離膜工程において、生物膜の形成による膜汚染現象を抑制又は緩和させるためのものであって、従来の逆洗浄及び化学洗浄のような物理化学的な観点での接近ではなく、生物膜形成機序の理解を土台にした分子生物学的観点での接近を基本とし、選択的に物理的な分離膜洗浄効果も得ることができる膜汚染抑制緩和技術を提供するためのものである。このような目的を果たすための研究の結果、本発明者は透過性permeable容器の内部に固定化された生物膜形成抑制微生物を含む生物膜形成抑制微生物固定化容器を分離膜水処理工程に適用することで、生物膜形成抑制微生物の活性を安定的に維持して、分子生物学的な観点で分離膜の膜汚染を効率的に抑制緩和することができるという点を発見し、本発明を完成するに至った。すなわち、本発明は透過性容器及び前記容器の内部に固定化された生物膜形成抑制微生物を含む生物膜形成抑制微生物固定化容器を提供し、さらに被処理水を収容する反応槽、水処理用分離膜モジュール及び前記反応槽内部に配置した前記生物膜形成抑制微生物固定化容器を含む分離膜水処理装置を提供する。本発明で透過性容器とは、水処理反応槽内で生物膜形成抑制微生物を高密度に分離して配置することができるとともに、生物膜形成抑制微生物の生長及び活性に係わる酸素、栄養分、代謝物質などの流出入を可能にするように適切な透過性を有する容器であれば、材質、形態などに特別な制限はない。例えば、所定の孔径分布を有する多孔性の容器でもよく本発明の第1実施形態参照、ハイドロゲルのように曝気によって流動性を有する透過性の流動状担体でもよい本発明の第2実施形態参照。本発明の第1実施形態は中空型の多孔性容器及び前記容器の内部に固定化された生物膜形成抑制微生物を含む生物膜形成抑制微生物固定化容器に関するものである。図1aないし図1dは、本発明の第1実施形態による生物膜形成抑制微生物固定化容器の概念図及びその製作例の実際の写真であり図1a及び図1b:両側末端の密封構造、図1c及び図1d:一側末端の密封構造、図3は生物膜形成抑制微生物固定化容器が配置された水処理用分離膜生物反応槽装置の概略図である。本発明の第1実施形態による微生物固定化容器は、中空型の多孔性容器の内部に前記容器の内部に生物膜形成抑制微生物を補集した形態に製作することができるし、生物膜形成抑制微生物が中空型の多孔性容器内部に固定化され、水処理反応槽の方に流出されないながらも、生物膜形成抑制酵素などの物質が容易に水処理反応槽の方に排出されるようにすることで、分離膜表面と分離膜細孔内部などでの生物膜汚染を安定的に低減することができるようにする。本発明の第1実施形態による中空型の多孔性容器は、生物膜形成抑制微生物を流出させないながらも、生物膜形成抑制酵素、水、信号分子物質などのような微細物質の伝達は可能にする程度の多孔性を有するものであるなら、材質又は形態上に特別な制限はなく、従来に水処理用に用いる管型又は中空糸型のような中空型のメンブレンや、所定の形態に製作したフィルタ容器などを用いることができる。通常の場合であれば、微生物の平均大きさが1~10μmであるので、これより小さな平均孔径の大きさを有することが微生物遺失を最小化することができるという点で好ましい。また、本発明の第1実施形態による生物膜形成抑制微生物固定化容器は、中空型の多孔性容器の内部に生物膜形成抑制微生物を注入補集して両側末端を密封して製作することもできるが図1a及び図1b参照、一側末端のみを密封し、他の一側の末端にはフィルタのような微生物流出入防止用多孔性部材を付着した導管を追加して連結し、水処理反応槽外部の大気に露出され得る構造に製作することで、水処理反応槽内で中空型メンブレンを介した水、生物膜形成抑制酵素などの物質伝達をより容易にすることもできる図1c及び図1d参照。一方、本発明の第2実施形態は、水中曝気によって流動性を有する透過性容器担体及び前記容器担体内部に固定化された生物膜形成抑制微生物を含む生物膜形成抑制微生物固定化容器に関するものである。これにより、担体内部に固定化された生物膜形成抑制微生物によって分子生物学的に生物膜形成を抑制することができるし、これとともに水中曝気条件での担体の流動性によって、分離膜表面に直接物理的な打撃を加えて分離膜表面に形成された生物膜の脱離を誘導するようになることで、物理的な生物膜の脱離を誘発することができるようになる。本発明の第2実施形態での担体は、親水性の高分子からなるハイドロゲルを主成分として含むものを用いることができ、より具体的には、ハイドロゲルはアルジネイト、PVA、ポリエチレングリコール及びポリウレタンからなる群から選択される少なくとも1種これら成分の複合体も含むを含むことができるし、このような材質の流動状担体を用いることで担体の内外を通じた物質伝達が容易くなるのみならず水中曝気条件で浸漬型分離膜表面の損傷を防止することができる。また、本発明の第2実施形態でのハイドロゲルは、内部の化学的架橋結合を介して3次元網状構造を有することが、生物膜形成抑制微生物を化学的架橋結合の間に捕獲させて担体内部で持続的に成長することができるようになるという点で好ましい。例えば、アルジネイトは親水性天然高分子を主成分として含む担体物質であるが、塩化カルシウム溶液内で化学的な結合である架橋を介して物質伝達に対する抵抗を最小化する網状型構造に固形物を形成することになる。これをもって、生物膜形成抑制微生物だけでなく、前記微生物によって生産された酵素も固定化することが可能であり、生体適合性biocompatibilityが優れているので、水処理用微生物が存在する反応槽内で用いるのに適しており、価格が安く経済性が高いながらも人体に無害だという点でも好ましい。ひいては、本発明の第2実施形態での担体は、実質的に球形からなるか球形に近い形態を有するものを用いることができるが、これによって水中曝気条件で浸漬型分離膜表面の損傷を防止することができる。また、本発明の第2実施形態の流動状担体は、担体の大きさの調節が容易であるので、マイクロシーブmicrosieveのような手段を容易く分離回収することができ、従来の磁性担体容器において、問題になった担体の回収問題を解決することができるという長所がある。本発明に適用可能な生物膜形成抑制微生物は、生物膜形成抑制酵素を生産することができる種類の微生物であるなら、遺伝子再組合微生物又は天然微生物のどのような種類でも用いることができる。代表的には、定足数感知機序に用いられる信号分子を分解する定足数感知抑制酵素を生産することができる微生物を用いることができ、好ましくはラクトナーゼ又はアシラーゼのような定足数感知抑制酵素を生産する微生物を用いることができる。例えば、遺伝子再組合に広く使われる大腸菌EcoliXL1blueにBacillusthuringiensissubspkurstakiから抽出したaiiA遺伝子ラクトナーゼ生産に関わる遺伝子を再組合させた大腸菌、又は自然界に存在する天然微生物例えば、Rhodococcusqingshengii種の菌株を用いることができる。本発明者は、水処理工程に適用するのに相応しいRhodococcusqingshengii種の菌株を手に入れるために、実際に都市下水処理場の生物反応槽からスラッジを採取して、微生物を分離同定した後、分離した多くの微生物から集積培養Enrichmentculture方法を用いて、信号分子分解活性が優れたRhodoccocus属の微生物Rhodococcusqingshengiiなどを分離して用いたりもした。本発明において、生物膜形成抑制微生物を固定化容器の内部に固定化させる方法は、流動状担体の内部に微生物を固定化させることができる方法であれば特別な制限はなく、付着adhesion、包括法entrapment、カプセル化encapsulationなどの方法のみならず、容器内部にセルを注入させて補集させる単純な方法を用いることもできる。例えば、本発明の第1実施形態では生物膜形成抑制微生物をポンプを用いて、メンブレンのような中空型の多孔性容器内部に注入し図2参照、本発明の第2実施形態では生物膜形成抑制微生物を水に懸濁した高濃縮微生物懸濁液をハイドロゲルとともに混合し、塩化カルシウム溶液に一定の流量で滴下しながら包括して一定の大きさの担体容器を製造した図11参照。また、本発明は生物膜形成抑制微生物固定化容器が内部に配置された水処理反応槽と、水処理用分離膜モジュールを含む分離膜水処理装置を提供する。本発明の分離膜水処理装置に適用することができる分離膜モジュールとしては、生物膜汚染の抑制又は緩和を介して透水度を向上させることができる一般的な水処理用分離膜モジュールであれば特別な制限はない。また、本発明の分離膜水処理装置としては、反応槽内部の数多くの種類の水処理用微生物などによって分離膜表面に生物膜が形成される分離膜生物反応槽MBR装置のみならず、被処理水に存在する微生物によって分離膜表面に生物膜が形成される精密濾過膜装置、限外濾過膜装置のような通常の分離膜水処理装置の他にナノ濾過装置、逆浸透濾過装置などの高度水処理装置を挙げることができる。本発明の生物膜形成抑制微生物固定化容器によれば、分離膜の表面に形成される生物膜の形成を分子生物学的な方法で抑制し、選択的に物理的な膜汚染除去効果も得ることで、分離膜の水処理工程での透水率の低下を防ぐと同時に、既存の分離膜に比べて膜洗浄周期が長くなり、洗浄薬品の消耗量を減らすことができるのみならず、長時間の濾過工程を行うことができる。以下、実施例を介して本発明を詳しく説明するが、本発明はこれに限定されるものではない。第1実施形態製作例1A生物膜形成抑制微生物が固定化された容器両側末端密封の製作生物膜形成抑制微生物としては、ラクトナーゼを生産することができるように遺伝子再組合された大腸菌を用いた。具体的には、遺伝子再組合に用いられた微生物は、よく使われる大腸菌EcoliXL1blueを用いて、この微生物にBacillusthuringiensissubspkurstakiからのaiiA遺伝子を再組合して挿入した。aiiA遺伝子は、定足数感知機序に用いられる信号分子を分解する酵素であるラクトナーゼを生産する遺伝子である。生物膜形成抑制微生物を固定化するための中空型の多孔性容器としては、Econity社で生産した中空糸膜を利用した。この中空糸膜は04μmの孔径を有するので、微生物は透過することができず、水、流入水成分及び信号伝逹物質などは容易に孔径を通過して容器内部と反応槽被処理水の間を移動することができる。総55本の中空糸膜を用いて、長さ10cmで、総膜表面積11231cm2の微生物固定化容器を図1a及び図1bのように両側末端が密封された形態に製作した。24時間培養した前記大腸菌200mlを遠心分離した後、上澄液を捨てて培養液成分を取り除き、TrisHCl50mM緩衝溶液pH70を用いて再懸濁させた後、図2のようにポンプを用いて容器の内部に注入した。製作例2A生物膜形成抑制微生物が固定化された容器一側末端密封の製作中空糸膜を利用した微生物固定化容器を両側末端の全てを密封せず、反応槽に浸漬された一方の末端のみを密封して、他の一方の末端はフィルタPTFE材質、045μm孔径部材を挿入した後に、チューブを連結して外部大気と連通させる構造を有することを除いては、製作例1Aでと同様にして微生物固定化容器を製作して生物膜形成抑制微生物大腸菌を注入した図1c、図1d及び図2参照。実施例1A生物膜形成抑制微生物が固定化された容器の信号分子分解の活性測定生物膜形成抑制微生物固定化容器の信号分子AHL分解活性は、代表的な信号分子中の一つであるNoctanoylLhomoserinelactoneOHLを用いた。試験管にTrisHCl50mM緩衝溶液pH7を入れて、OHLを02μM濃度になるように注入した後、生物膜形成抑制微生物が固定化された容器を入れて30°Cの振盪培養器に入れて200rpmで90分間反応させた。これを介して90分間約60パーセントの信号分子物質が分解されたことを確認することができた図5参照。比較例1A実施例1Aで容器内部に微生物を充填しないことを除いては、実施例1Aと同様にして実験をした場合、信号分子がほとんど分解されないことを確認することができる図5参照。実施例2A分離膜生物反応槽工程への適用遺伝子再組合微生物両側末端密封型固定化容器前記製作例1Aで製作した生物膜形成抑制微生物固定化容器を、実験室規模の分離膜生物反応槽工程に適用した図3参照。具体的には、円筒状の反応槽内に活性スラッジを12L満たして入れ、下端部に散気石を設けて1Lminの曝気状態を維持するようにした。生物膜形成抑制微生物固定化容器は、反応槽内に対称に総2個設置した。連続工程のために、主炭素源としてグルコースを用いた合成廃水が流入ポンプを介して流入されるようにした。合成廃水の化学的酸素要求量CODは約550ppmであり、水理学的滞留時間は12時間として運転した。反応槽内に設けられた濾過用分離膜は浸漬型中空糸膜であって、限外濾過膜Zeeweed500、GEZenon社製、孔径004μmを使い、分離膜を透過する処理水のフラックスを18Lm2hrで運転した。また、水位調節器と3方弁3wayvalveを介して、処理水の一部は反応槽に戻るようにして反応槽の水位を維持させた。運転中MLSSMixedLiquorSuspendedSolidsは4500~5000mgLに維持した。運転が進行されるのに伴い、分離膜表面で生物膜が形成され、これは膜汚染の増加による分離膜の透水度低下に続くが、このような生物膜汚染の程度を膜間差圧transmembranepressure、TMPの数値で表し、膜間差圧が増加するほど生物膜汚染の程度が深化されたことを示す。200時間の運転結果、膜間差圧は13kPaに過ぎなかった図4参照。比較例2A実施例2Aで容器内部に微生物を充填しないことを除いては、実施例2Aと同様に運転した。200時間の運転結果、膜間差圧は50kPaに到達した図4参照。実施例3A生物膜形成抑制微生物を固定化した容器の活性維持確認前記生物膜形成抑制微生物固定化容器の信号分子の分解活性が長期間維持されるのかを確認してみた。具体的には、連続工程反応槽内で、25日運転後と80日運転後に生物膜形成抑制微生物が固定化された容器を取り出して蒸溜水で何回も容器の外部を洗い出した後、実施例1のような実験を行った図6参照。その結果80日が経っても、信号分子分解活性が大きく落ちないことを確認することができた。実施例4A分離膜生物反応槽工程への適用天然微生物両側末端密封型固定化容器実施例2Aに用いられた微生物は、大腸菌にラクトナーゼ生産遺伝子を挿入して遺伝子組み換え処理をしたものであって、これは実際廃水環境で長時間生存し難い種である。したがって、実際の水処理工程に適用するのに相応しい微生物を捜すために韓国の忠清北道に位置する沃川下水処理場からスラッジを採取して微生物を分離し出した。分離した多くの微生物の中で信号分子分解微生物を捜すために、集積培養enrichmentculture法を用いて、これを介し信号分子分解活性が優れたRhodoccocus属の微生物を分離し出すことができた。この微生物を用いて、前記製作例1Aと同様の方法で生物膜形成抑制微生物固定化容器を製作し、前記実施例2Aと同様の条件で分離膜生物反応槽工程に適用した。前記に言及した方法で製造した生物膜形成抑制微生物固定化容器を、実験室規模の分離膜生物反応槽工程に適用した。40時間の運転結果、膜間差圧は24kPaに到達した図7参照。比較例4A実施例4Aで容器内部に微生物を充填しないことを除いては実施例4Aと同様にして運転した。40時間の運転結果、膜間差圧は50kPaに到達した図7参照。実施例5A分離膜生物反応槽工程への適用天然微生物一側末端密封型固定化容器実施例4Aで用いた活性スラッジを円筒状の反応槽内に25L満たして入れ、製作例2Aで製作した生物膜形成抑制微生物固定化容器を反応槽内に対称に総4個設けて、グルコース含有合成廃水の水理学的滞留時間を8時間に設定し、分離膜を透過する処理水のフラックスを30Lm2hrに変更して運転中MLSSは7500~8500mgLに維持したことを除いては、実施例4Aと同様に分離膜生物反応槽工程を運転した。50時間の運転結果、膜間差圧は22kPaに到達した図8参照。比較例5A実施例5Aで、容器内部に微生物を充填しないことを除いては、実施例5Aと同様にして運転した。40時間の運転結果、膜間差圧は64kPaに到達した図7参照。第2実施形態製作例1B生物膜形成抑制微生物が固定化された流動状担体の製作及び信号分子分解の活性測定生物膜形成抑制微生物としては、実際水処理工程に適用するのに相応しい微生物であって、定足数感知抑制酵素の一種であるラクトナーゼを生産するものと知られたRhodoccocusqingshengiiを、第1実施形態と同様の方法によって都市下水処理場のスラッジから分離して用いた。この微生物を用いて、生物膜形成抑制微生物を固定化するための流動状担体はシグマ社Sigmacoで生産した天然高分子物質であるナトリウムアルジネードsodiumalginateを利用したが、アルジネイトは微生物包括法に使われる代表的な物質である。分離膜生物膜反応槽内で長時間物理的な強度を維持するために、様々な濃度のアルジネイトに対して事前テストを行い、本発明の製造例では最終噴射時の濃度を基準にして、アルジネイト溶液の濃度を4wtに調整した。Rhodoccocusqingshengiiは、24時間振盪培養shakedcultureして増殖をさせ、200mlの振盪培養液を遠心分離した後、上澄液の培養液成分を取り除いて、残ったRhodoccocusqingshengiiの凝集体をTrisHCl50mM緩衝溶液pH70を用いて洗浄し、超純水に再懸濁させた。その後、図3に示したところのように、前記生物膜形成抑制微生物の再懸濁液と前記アルジネイト液を混合して、塩化カルシウムCaCl2溶液に噴射し、これによって化学的な架橋結合を介して内部に物質伝達がはかどる網状型の流動状担体を作った。流動状担体を作る際、最終噴射時のアルジネイトの濃度は4wtにして、2wtの塩化カルシウムCaCl2液で1時間架橋をさせた後、物理的な強度を増加させるために常温で20時間乾燥した。生物膜形成抑制微生物固定化流動状担体の信号分子AHL分解活性は、第1実施形態と同様にNoctanoylLhomoserinelactoneOHLを用いて測定した。試験管にTrisHCl50mM緩衝溶液pH7030mLを入れて、OHLを02μM濃度になるように注入した後、生物膜形成抑制微生物Rhodoccocusqingshengiiが固定化された流動状担体を入れて、30度の温度の振盪培養器に入れて200rpmで60分間反応させた。これを介して、生物膜形成抑制微生物から生産された生物膜形成抑制酵素ラクトナーゼにより、60分間約92パーセントの信号分子物質が分解されたことを確認することができた図12。実施例1B分離膜生物反応槽装置への適用前記に言及した方法で製造した生物膜形成抑制微生物固定化流動状担体を、実験室規模の分離膜生物反応槽装置に適用した図13参照。具体的には、円筒状の反応槽内に活性スラッジを16L満たして入れ、下端部に散気石を設けて1Lminの曝気状態を維持するようにし、生物膜形成抑制微生物固定化流動状担体は、反応槽内に総60個投入した。連続工程のために、主炭素源としてグルコースglucoseを用いた合成廃水が、流入ポンプを介して流入されるようにした。合成廃水の化学的酸素要求量CODは約560ppmであり、水理学的滞留時間は53時間hrで運転した。反応器内に設けられた濾過用分離膜は、浸漬型中空糸膜として限外濾過膜Zeeweed500、GEZenon社製、孔径004μmを用いて、分離膜を透過する処理水のフラックスを287Lm2hrで運転した。また、水位調節機と3方弁3wayvalveを介して処理水の一部は反応器に戻るようにし、反応器の水位を維持させた。運転が進行されるのに伴い、分離膜表面で生物膜が形成され、これは膜汚染の増加による分離膜透水度の低下に続くが、このような生物膜汚染の程度を膜間差圧transmembranepressure、TMPの数値で表し、膜間差圧が増加するほど生物膜汚染の程度が深化したことを示す。実験結果、77時間の運転後には膜間差圧が5kPaに過ぎず、400時間の運転後に膜間差圧が70kPaに到達した図14参照。比較例1B実施例1Bで、生物膜形成抑制微生物固定化流動状担体の代わりに、微生物を全く固定化させないハイドロゲル流動状担体製作例1Bで生物膜形成抑制微生物を固定化させず製造した担体60個を反応槽に投入したことを除いては、実施例1Bと同様にして運転した。その結果、77時間の運転後に膜間差圧は70kPaに到達した図14参照。比較例2B実施例1Bで、分離膜生物反応槽内に生物膜形成抑制微生物固定化流動状担体を投入しないことを除いては、実施例1Bと同様にして運転した。その結果、43時間の運転後に膜間差圧は70kPaに到達した図14参照。すなわち、前記実施例1B及び比較例1B2Bから、本発明の生物膜形成抑制微生物固定化流動状担体が投入された分離膜生物反応槽装置の場合実施例1Bでは、微生物が固定化されない流動状担体を投入した場合比較例1Bと流動状担体を投入しない場合比較例2Bに比べて分離膜表面の生物膜による膜汚染現象が著しく緩和されることを確認することができるが、これは流動状担体内部に安定的に固定化された生物膜形成抑制微生物の生物膜形成抑制機序の制御による分子生物学的効果以外に、水中曝気によって流動性を有する担体による分離膜表面の物理的洗浄によって、膜汚染除去効果が相乗的に示されたものと推定される。実施例2B生物膜形成抑制微生物固定化流動状担体の活性維持確認本発明の生物膜形成抑制微生物固定化流動状担体の内部にある生物膜形成抑制微生物の信号分子分解活性が長期間維持されるのかを確認する実験を行った。具体的には、前記実施例1Bで生物膜形成抑制微生物固定化流動状担体を反応槽に投入した時点を基準に、0、1、3、5、7、10、13、15、17、20、23、25、27、30日目になる日に、それぞれ生物膜形成抑制微生物固定化流動状担体を取り出し、蒸溜水で何回も流動状担体の外部を洗い出した後、前記の製作例1Bと同じ実験を行った。その結果を、0日の生物膜形成抑制微生物固定化流動状担体が有する活性を基準100にして相対的活性度を測定した。その結果、20日以上運転した後にも生物膜形成抑制微生物固定化流動状担体は信号分子分解活性が減少せず、むしろ初期0日の活性度に比べ、やや増加していることが確認できた図15。実施例3B流動状担体内の生物膜形成抑制微生物の成長確認本発明の生物膜形成抑制微生物固定化流動状担体を、長時間分離膜生物反応槽内で投入して運転する場合、生物膜形成抑制微生物の成長程度に対する確認実験を行った。具体的には、前記実施例1Bで生物膜形成抑制微生物固定化流動状担体を反応槽に投入した時点から25日間運転しながら、24時間ごとに生物膜形成抑制微生物が固定化になった流動状担体を10個ずつ取り出し、蒸溜水で何回も流動状担体の外部を洗い出した後、湿重量wetweight5回反復実験の平均値を測定した。その結果25日が経つと、初期0日包括した生物膜形成抑制微生物より湿重量が徐々に増加する傾向を示している図16。比較例3B実施例3Bで、生物膜形成抑制微生物を固定化しないアルジネイト流動状担体を用いたことを除いては、実施例3Bと同様にして実験を行い、湿重量の変化がほとんどないことを確認することができた図16。すなわち、前記実施例2B3B及び比較例3Bから、本発明の生物膜形成抑制微生物固定化流動状担体内部に包括されている生物膜形成抑制微生物が内部で成長した結果、湿重量が増加して、これは生物膜形成抑制微生物が流動状担体内部で正常に成長することを意味する。これによって信号分子分解活性も減少せず、やや増加することが分かる。