血液の輸送の間の、血液の生体外刺激のためのシステムであって、前記システムは、装置内に少なくとも2つの温度範囲を発生させ維持できる持ち運び可能な装置を含み、前記装置は、内部空洞を有する断熱装置シェルであって、前記空洞が、複数の採血管を収容するような寸法である、断熱装置シェル;加熱源であって、前記加熱源の起動後に、前記装置内の温度を、約25°Cから40°Cの範囲の第一温度で少なくとも1時間維持でき、前記維持される温度付近の温度変動が±2.5°C以内である加熱源;及び冷却源であって、前記装置内の温度を、室温より低い第二温度に少なくとも4時間、前記第二温度付近の温度変動が±5°C以内で維持できる冷却源を含む、血液の生体外刺激のためのシステム。前記第一温度相が、約37°C±2.5°Cの維持される温度を含む、請求項1に記載のシステム。前記第二温度相が、約4°C±5°Cの維持される温度を含む、請求項1に記載のシステム。抗凝血剤及び刺激剤を含む複数の採血管をさらに含む、請求項1に記載のシステム。前記刺激剤が、化学療法剤、免疫調節剤、ワクチン、アジュバント、組換タンパク質、モノクローナル抗体、レクチン、感染因子からの誘導体、アレルゲン、及びこれらの組み合わせを含む、請求項4に記載のシステム。抗凝血剤及び前記刺激剤の対応する対照溶媒を含む、第二の複数の採血管をさらに含む、請求項1に記載のシステム。前記採血管が、非ガラス管;1種以上の抗凝血剤;1種以上の白血球刺激剤;及び前記採血管を密封する穴あけ可能な自己気密キャップを含み、前記採血管内の圧力が、前記採血管の外の圧力に比べて負である、請求項4に記載のシステム。前記採血管が、負圧により活性化される可視マーカーをさらに含む、請求項7に記載のシステム。後の検索のために、前記空洞内の温度を連続的に記録する温度記録装置をさらに含む、請求項1に記載のシステム。前記持ち運び可能な装置内に配置され、前記加熱装置及び前記採血管を収容するように構成された、追加の断熱容器をさらに含む、請求項1に記載のシステム。前記加熱源が電池作動式である、請求項1に記載のシステム。前記加熱源が、1つ以上の一次使い捨て電池により作動する、請求項11に記載のシステム。前記加熱源が、1つ以上の二次再充電可能電池により作動する、請求項11に記載のシステム。前記加熱源が、化学反応により熱を発生させる、請求項11に記載のシステム。前記温度記録装置が電池作動式である、請求項11に記載のシステム。前記温度記録装置が、1つ以上の一次使い捨て電池により作動する、請求項15に記載のシステム。前記温度記録装置が、1つ以上の二次再充電可能電池により作動する、請求項15に記載のシステム。前記冷却源が、再使用可能な冷却剤を含む、請求項1に記載のシステム。負圧により血液を採取するための非ガラス採血管であって、非ガラス管;1種以上の抗凝血剤;1種以上の白血球刺激剤;負圧により活性化する可視マーカー;及び前記採血管を密封する穴あけ可能な自己気密キャップを含み、前記採血管内の圧力が、前記採血管の外の圧力に比べて負である、非ガラス採血管。前記1種以上の白血球刺激剤が、化学療法剤、免疫調節剤、ワクチン、アジュバント、組換タンパク質、モノクローナル抗体、レクチン、感染因子からの誘導体、アレルゲン、及びこれらの組み合わせからなる群から選択される、請求項19に記載の非ガラス採血管。前記1種以上の抗凝血剤がヘパリンを含む、請求項19に記載の非ガラス採血管。前記管が、約25°Cから約40°Cの温度で、少なくとも約1時間のインキュベーションに好適である、請求項19に記載の非ガラス採血管。前記管が、血液試料を凍結するのに十分低い温度での保存に好適であり、前記採血管が前記温度で構造的に安定である、請求項19に記載の非ガラス採血管。対象から血液試料を得る方法であって、請求項19に記載の採血管を、負圧の活性化された可視マーカーの存在があるか調べること;前記活性化されたマーカーが存在する場合、前記対象の静脈系の静脈に穴をあけること;前記自己気密キャップに穴をあけること;及び負圧が均等化されるまで又は所望の体積が採取されるまで採血管に血液を満たすことを含む方法。血液試料の生体外刺激の方法であって、請求項24に記載の方法により、対象から血液試料を得ること;装置内に制御された環境を発生させ維持できる持ち運び可能な装置であって、前記持ち運び可能な装置が、前記採血管を収容するような寸法である内部空洞を有する断熱装置シェル;電池作動式の加熱源であって、前記加熱源の起動後に、前記内部空洞内の温度を、約25°Cから約40°Cの範囲の温度で少なくとも1時間維持でき、前記維持される温度付近の温度変動が±2.5°C以内である加熱源;及び冷却源であって、再使用可能な冷却剤を含み、前記装置内の温度を、室温より低い第二温度に少なくとも4時間、前記第二温度付近の温度変動が±5°C以内で維持できる冷却源を含む装置中に、前記血液試料を含む採血管を置くこと;及び前記電池作動式加熱源を起動することを含む方法。1種以上の抗凝血剤及び前記1種以上の白血球刺激剤の対照溶媒を含む第二の非ガラス採血管を、負圧の活性化されたマーカーが存在するか調べること;前記活性化されたマーカーが存在する場合、前記非ガラス採血管の自己気密キャップに穴をあけること及び前記対象の穴をあけた静脈から第二の血液試料を採取すること;前記第二の血液試料を含む第二の採血管を、前記持ち運び可能な装置中に置くことをさらに含む、請求項25に記載の方法。前記第一及び第二の血液試料を前記持ち運び可能な装置から取り出すこと、及び前記第一及び第二の血液試料から1種以上のターゲットmRNA又は1種以上のターゲットタンパク質を測定することを含む、前記血液試料の生体外分析をさらに含む、請求項26に記載の方法。血液試料の生体外刺激の方法であって、対象から、第一の血液試料を、非ガラス管、1種以上の抗凝血剤、及び1種以上の白血球刺激剤を含む採血管に採取すること;前記採血管を、請求項1に記載の血液の生体外刺激のためのシステム中に置くこと;及び前記電子作動式の加熱源を起動し、それにより前記血液試料を生体外刺激することを含む、血液試料の生体外刺激の方法。血液試料の生体外刺激のためのキットであって、非ガラス管;1種以上の抗凝血剤;1種以上の白血球刺激剤;及び採血管を密封する穴あけ可能な自己気密キャップを含む、負圧により血液を採取するための非ガラス採血管であって、前記採血管内の圧力が、前記採血管の外の圧力に比べて負である非ガラス採血管;並びに装置内に少なくとも2つの温度相を発生させ維持できる持ち運び可能な装置であって、複数の前記採血管を収容するような寸法の内部空洞を有する断熱装置シェル;加熱源の起動後に、前記装置内の温度を約25°Cから約40°Cの温度で少なくとも1時間維持できる加熱源であって、維持される温度付近の変動が±2.5°C以内の加熱源;及び前記装置内の温度を、室温より低い第二の温度で、少なくとも4時間、前記第二の温度付近の温度変動が±5°C以内で維持できる冷却源を含む装置を含む、血液試料の生体外刺激のためのキット。前記第一温度相が、約37°C±2.5°Cの維持される温度を含む、請求項29に記載のキット。前記第二温度相が、約4°C±5°Cの維持される温度を含む、請求項29に記載のキット。前記1種以上の白血球刺激剤が、化学療法剤、免疫調節剤、ワクチン、アジュバント、組換タンパク質、モノクローナル抗体、レクチン、感染因子からの誘導体、アレルゲン、及びこれらの組み合わせからなる群から選択される、請求項29に記載のキット。前記1種以上の抗凝血剤がヘパリンを含む、請求項29に記載のキット。前記管が、約25°Cから約40°Cの温度で、少なくとも約1時間のインキュベーションに好適である、請求項29に記載のキット。前記管が、血液試料を凍結するのに十分低い温度での保存に好適であり、前記採血管が、前記温度で構造的に安定である、請求項29に記載のキット。詳細な説明生体外血液刺激の改善された方法並びにそのような方法を達成するための装置が必要とされている。生体外刺激のいくつかの既存の方法は、採血後の条件に依存する。しかし、長期間の血液の保存は生理学的でなく、血液試料及び試験に悪影響を与えうる。さらに、mRNA誘導は、保存中に変化することがある。理想的には、血液は、採血後直ちに刺激すべきである。血液の取扱い、37°Cでのインキュベーション、及び白血球単離、又は刺激後の血液の-80°Cの温度での保存は、多くの場合又は場所で実際的ではない。例えば、血液が、高性能な試験所又は病院の外の場所で採取される場合、生理学的な条件下でのインキュベーション又は刺激後の血液の-80°Cの温度での保存は実際的でないことがある。さらに、一貫した反復可能な全血の生体外刺激に使用できる持ち運び可能な装置の必要性も存在する。刺激された血球をインキュベートできる持ち運び可能な装置及びそれを使用する方法の必要性も存在する。刺激後の血球から白血球を単離して保存できる持ち運び可能な装置及びそれを使用する方法の必要性も存在する。いくつかの実施形態において、全血の生体外刺激のための方法及び装置が本明細書に開示される。いくつかの実施形態において、本明細書に開示される装置は持ち運び可能である。いくつかの実施形態において、前記装置は、フィールドで、例えば病院又は試験所の外の場所で使用できる。いくつかの実施形態において、前記装置は、自己制御的に、例えば、装置内の特定の所望の温度を特定の期間維持するように構成されている。いくつかの実施形態において、2つ以上の温度が時間を経て維持される例えば、連続的に所望の温度が得られる。いくつかの実施形態において、前記装置は、以下により詳細に記載されるとおり、全血試料の刺激、そのインキュベーション及び保存、並びに輸送に連続的に使用するのに好適である。いくつかの実施形態において、全血は、対象から真空採血管に採取される。比較的単純明快な遺伝子特異的プライマー及びプローブの特定及び製造により、遺伝子増幅技術は、異なる遺伝子のプールからですら、特異的mRNAのレベルの特定及び定量を可能にし、全血をmRNA分析の理想的な物質にする。いくつかの実施形態において、1つ以上の採血管は、血液刺激剤を含む。いくつかの実施形態において、採取された全血は、採取と同時にヘパリン処理される。いくつかの実施形態において、全血は2つ以上の採血管に採取される。刺激剤は、液体でも固体でもよい。管は、全血を撹拌してヘパリン及び/又は刺激剤との混合を促進するのに十分な方法で、振盪又は動かすことができる。いくつかの実施形態において、前記刺激剤は、化学療法剤、免疫調節剤、ワクチン、アジュバント、組換タンパク質、モノクローナル抗体、レクチン、又は感染因子からの誘導体を含む。いくつかの実施形態において、前記化学療法剤は、シタラビン、ダウノルビシン、ドキソルビシン、イダルビシン、エトポシド、アクラルビシン、又はミトキサントロンを含む。いくつかの実施形態において、組換タンパク質は、インターロイキン例えば、インターロイキン-2又はインターロイキン-10及びインターフェロン例えば、インターフェロンγを含む。いくつかの実施形態において、感染因子からの誘導体は、精製されたタンパク質誘導体である例えば、ツベルクリンPPDなどのPPD。フィトヘマグルチニンPHA、チモサン、腫瘍壊死因子などの他の刺激剤も使用される。いくつかの実施形態において、血液が管に採取された後、血液は、全血の刺激を促進する条件下でインキュベートされる。好ましい実施形態において、血液は生理学的な条件下でインキュベートされる。いくつかの実施形態において、約37°Cの温度が利用されて、生理学的条件が刺激される。いくつかの実施形態において、約30°Cから約33°C、約33°Cから約35°C、約35°Cから37°C、又は約37°Cから約39°Cの温度が利用される。いくつかの実施形態において、試料は生理学的な温度に維持され、約30分から約1時間、約1時間から約2時間、約2時間から約3時間、約3時間から約4時間、及びこれらの重複する範囲を含む約30分から約4時間インキュベートされる。いくつかの実施形態において、インキュベーションは、4時間より長くなりうる例えば、4から6時間、6から8時間、8から10時間、10~12時間、12~24時間、及びこれらの重複する範囲。いくつかの実施形態において、試料は、1つ以上の管を加熱できる熱源を有する保存容器又はインキュベーターに置かれる。好ましくは、保存容器又はインキュベーター中の熱源は、血液試料に生理学的条件例えば、およそ生理学的温度を維持できる。いくつかの実施形態において、前記熱源は、約30分から1時間、約1時間から約2時間、約2時間から約3時間、約3時間から約4時間、及びこれらの重複する範囲を含む約30分から約4時間の間、血液管に生理学的条件を維持できる。いくつかの実施形態において、インキュベーション時間は、4時間より長い例えば、約6~8時間又は8時間から一晩。いくつかの実施形態において、前記熱源は加熱パッドを含む。いくつかの実施形態において、前記加熱パッド又は他の加熱装置は電池で作動して、熱を与える。いくつかの実施形態において、所望のインキュベーション期間の後にヒーターの電源が切れるように、タイマーがヒーターの作動時間を制御する。いくつかの実施形態において、ペルチェ熱源が使用される。いくつかの実施形態において、自己内蔵型。いくつかの実施形態において、水ジャケットが使用され、インキュベーターの内部を、所望のインキュベーション又は保存の温度に加熱又は冷却するために、所望の温度の水がインキュベーターの壁の中を循環する。いくつかの実施形態において、断熱材装置全体の内部にが使用されて、管が熱源の近傍に置かれ、経時的なインキュベーション温度の安定性を向上させる。加熱源と同様に、いくつかの実施形態において、冷却源は電池作動式でよいが、化学反応に基づいていてもよい例えば、尿素、硫酸アンモニウム、及び水。冷却システムは、スターリングクーラーFPSCなどの発電機様装置又はペルチェクーラーなどの電気装置を任意に含んでよい。いくつかの実施形態において、自己内蔵型再使用可能なアイスパックが使用される。いくつかの実施形態において、冷却システムは、装置内の温度を、少なくとも24時間維持する例えば、持ち運び可能な装置の輸送の間。いくつかの実施形態において、冷却システムは、装置内の温度を、約24から約72時間維持できる。いくつかの実施形態において、この期間は、加熱源が稼働している場合のインキュベーション期間を含む。したがって、いくつかの実施形態において、採血管は、加熱源が稼働している間に生理学的温度でインキュベートされ、次いで加熱源が切れると、採血管は、輸送プロセスの間により低い温度で保存される例えば、mRNAを安定化するため。いくつかの実施形態において、保存容器又はインキュベーターは、血液試料管中に生理学的条件を維持しながら、病院又は試験所に輸送又は発送されるように構成されている例えば、装置の発送は、血液試料の刺激及びその後の冷却と同時である。いくつかの実施形態において、血液試料は、保存容器又はインキュベーターから取り出され、約-80°Cの温度に冷却され、後の処理及び試験まで保存される。いくつかの実施形態において、インキュベーターを保存容器に変えるため、インキュベーターは保存容器と兼用になり、使用者がインキュベーターの配置を変える例えば、加熱パッドを除き、アイスパックを設置する。しかし、いくつかの実施形態において、別々のインキュベーター及び保存容器が使用される。さらに追加の実施形態において、単一の装置が、インキュベーター、保存容器、及び発送容器として機能する。例えば、いくつかの実施形態において、加熱源及び冷却源を含む単一の断熱装置例えば、容器が提供される。いくつかの実施形態において、前記装置は、装置内の温度履歴の分析を可能にする温度記録装置をさらに含む。いくつかの実施形態において、前記装置は、採血用の管を任意に備える。そのような実施形態において、管は、本明細書に記載のものなどの所望の刺激剤を任意に含む。そのため、所望の期間生理学的温度での刺激剤による血液試料の刺激例えば、インキュベーションを可能にし、それに続いて、刺激された血液試料のより低い温度例えば、室温以下の温度でのある期間のインキュベーションを可能にして、上記のそれぞれが、遺伝子発現分析の場所への装置の発送の間に起こる、単一の装置が提供される。そのような温度での刺激の後のmRNAの安定性は確立されている。mRNAの安定性にもかかわらず、温度記録装置は、適正な刺激条件に曝露されていなかった例えば、低すぎる又は高すぎる温度、短い又は長いインキュベーション時間など試料が特定でき廃棄できる、ある程度の品質管理を提供する。そのような装置は、採血試験所による使用に特に有利である。生体外刺激を実施する際の試験所同士の変動を避けるため、本明細書に開示されるものなどの装置が提供され、多数の試験所にわたる制御され反復可能な生体外刺激を可能にする。試験所は、最初に、患者から血液試料を得るだろう。いくつかの実施形態において、血液は標準的な採血管に採取されるが、好ましい実施形態において、血液は、所望の刺激剤又は対照溶媒を含む、試験所に供給された管に直接採取される。いくつかの実施形態において、採血は、任意に管内の真空に基づき実施され、それにより採取される体積による変動を低減する。刺激剤を含む管への採取の後、管は装置内に置かれ、熱源及び冷却源が作動される。いくつかの実施形態において、熱源及び冷却源は装置と一体化しており、いくつかの実施形態においては、使用者が作動された源を装置内に配置する。いくつかの実施形態において、温度記録装置が任意に作動されて、装置内に配置されるが、他の実施形態においては、温度記録装置は装置と一体化している。最後に、試験所は、装置を密封し、その後の遺伝発現分析のための中心位置に発送できる。そのような実施形態において、標準的なゴム管キャップが使用される。刺激及び単離が試験所で実施されることになっている他の実施形態において、以下により詳細に記載されるとおり、単離マトリックスisolationmatrixを含む特殊なキャップが使用される。本明細書に記載されるとおり、前記装置は、装置内の環境に断熱効果を与える材料で構成されている例えば、ポリスチレンフォーム、ファイバーグラスなど。そのため、加熱源及び冷却源と組み合わせると、装置は、所望の温度で所望の期間、装置内例えば、血液を含む管が置かれている所の温度を維持するように機能する。いくつかの実施形態において、維持されている温度プロファイルは、およそ生理学的温度での初期期間例えば、血液試料の刺激のためで始まり、それに続いて、より低い温度の二次期間例えば、mRNA刺激後の安定化のためがある。例えば、図6を参照されたい。mRNAの刺激及び関連する誘導の後、低い温度加熱源により与えられる生理学的温度に対しては、誘導されたmRNAを長期間維持するのに十分である試料を長期間保存できる中央試験所に装置を発送するのに十分であることを認識されたい。替わりとなる実施形態において、白血球は、血液試料の現場での刺激の後、現場で単離されることがある。インキュベーションの後、血液試料を含む管は、インキュベーターから取り出すことができる。採血管のキャップは外され、白血球捕捉膜を含むキャップと替えることができる。いくつかの白血球濾過膜が層になっていて、捕捉される白血球の収率を上げることができる。いくつかの実施形態において、白血球捕捉膜は、キャップが試料管に結合すると白血球膜が血液試料に面する例えば、並列するようにキャップに配置されている。いくつかの実施形態において、白血球捕捉膜を含むキャップは、水分吸着材料及び前記吸着材料を外すために開くことができる蓋も含む。いくつかの実施形態において、白血球膜は、キャップの近位の端部にあり、水分吸着材料はキャップの遠位の端部にある。いくつかの実施形態において、前記白血球捕捉膜は、ロイコソーブの発現を1つ以上の防御免疫マーカーに比較する比がなされる。さらに他の実施形態において、標準化は全く行われない。特定の実施形態において、本明細書に開示される装置のいずれかの組み合わせを含むキットが提供される。いくつかの実施形態において、前記キットは、ヘパリンを含む真空採血管、ヘパリン及び刺激剤を含む真空採血管、及び真空採血管を生理学的温度に少なくとも30分間維持できる加熱パッド又は他の熱源を含む。いくつかの実施形態において、前記キットは、1つ以上の真空採血管を保存及び発送できる保存容器を含む。いくつかの実施形態において、前記キットは、白血球膜及び水分吸着材料を含むキャップを含む。具体的な実施形態は、限定的でなく説明的な意味にみなすべき下記の実施例に関連して説明される。実施例1-生体外血液刺激図1~5は、いくつかの実施形態による、採血、試料の処理、処理された血液試料に対するmRNAアッセイの実施のための方法及び装置を示す。図1に示されるとおり、管A及びBは、全血球で満たされる前に、両方ともヘパリンを含む。他の実施形態において、ヘパリン又は他の抗凝血剤は、手作業で管に加えられることがある。管Aは、刺激剤を全く含まないので対照として使用される。管Bは乾燥した刺激剤を含む。上述のとおり、いくつかの実施形態において、追加の刺激剤を含む刺激剤は、手作業で加えられる。血液を試料管に採取し、次いで管を振盪又は撹拌して、ヘパリン及び/又は刺激剤を、採取した血液と確実に混合させる。次に、図2に示されるとおり、使い捨てインキュベーターを使用して、図1の血液試料をインキュベートする。いくつかの実施形態において、インキュベーションは、生理学的条件下で実施される。いくつかの実施形態において、約37°Cの温度が利用される。使い捨てインキュベーターは、試料を2~4時間加熱できる加熱パッドを有する。他の実施形態において、インキュベーションの時間及び/又は温度は、所望のとおり増加又は減少させることができる。次に、図3に示されるとおり、刺激された血液試料をインキュベーターから取り出す。管のキャップを除き、白血球膜及び吸着材料を含むキャップと替える。キャップが管に取り付けられると、白血球膜は管中の血液に近くなる。次に、インキュベーションの後、管を反転させ、それにより血液を白血球膜と接触させる。重力又は、実施形態によっては他の力、例えば真空は、血液試料の濾過を助ける。白血球は膜上に捕捉され、水分吸着材料は白血球膜を通る物質例えば、血漿、赤血球などを捕捉する。次に、2つの試料管を、所望の条件例えば、保存用に-80°Cのインキュベーターに戻す。図4に示されるとおり、次いで、インキュベーターを使用して、試料を保存又は発送する。図5に示されるとおり、試料管は、mRNAアッセイの準備のさらなる工程を受けることができる。白血球濾過膜及び水分吸着材料を含むキャップを、管から外す。次いで、水分吸着材料をキャップの蓋から外す。次いで、濾過された白血球を含む白血球濾材を、きれいな試料管に取り付ける。次に、溶解バッファーを、キャップの蓋に通して加え、白血球を処理する。次いで、管を回転又は遠心分離して、溶解物を管の底部に回収し、GENEPLATE又は他の回収容器複数可に移す。次いで、溶解物中のターゲットRNAの量を、PCR及び当分野に公知である他の方法により決定する。実施例2-採血管製造及び試験多くの場合、採血管はガラスでできているが、製造時の欠陥、温度の変動への曝露、又は手荒な取扱いにより壊れることがある。血液試料が採取されるのは患者の健康状態を評価する目的であることが多いと仮定すると、血液試料は、病原体、化学物質、又は血液試料を採取及び/若しくは分析する個体複数可にとって危険性を示す他の物質を含みうる。したがって、いくつかの実施形態において、管の破損及び作業員が患者の血液試料に意図せず曝露するリスクを低減する非ガラス採血管が提供される。本明細書に開示されるものなどの非ガラス採血管は、採取された血液試料を-70°Cより低温で凍結保存できるので例えば、刺激プロトコルの後に、従来のガラス管に比べて有利であるが、最終的な分析に先立つ解凍プロセスの間に破損するリスクが少しある。いくつかの実施形態において、非ガラス管はポリプロピレンを含む。他の実施形態において、ポリスチレン管が使用される。さらに追加の実施形態において、管内の負圧の発生及び維持及び1つ以上の凍結解凍サイクルに十分耐える他のポリマー管又はプラスチック管が使用される。多くの採血管は、血液を患者又は別な採血装置から採血管に流させる負の内圧外的環境に対してを有することにより作用する。これにより、患者にあまり不快感を与えずに血液が採取可能であるだけでなく、血液が患者の静脈系に逆流することも防ぐ。負の内圧を有する非ガラス例えば、プラスチック管を製造する再現性を決定するため、自己気密性で穴あけ可能なキャップを有するプラスチック管を、負の内圧を有するように手作業で作成した。3つの管を、4つの実験のそれぞれで作成した合計12個の管。一端が水に浸かっている21ゲージ針を使用してキャップに穴をあけ、負圧により水を管の中に引き込んだ。次いで、各組の管の重量を秤量した。図7に示されるとおり、実験の間で管の平均重量に著しい差はなく、そのような採血管の製造に再現性があることを示している。試料採取に関する再現性に加えて、管内の負圧の維持及び管自体の耐久性に関する十分な貯蔵寿命を管が有することが重要である。したがって、追加の管を、上述のとおり準備した。次いで、それらを室温で0~14日間保存した。上述のとおり、21ゲージ針を使用して、水を採取し、管を秤量した。図8は重量を示し、2日間保存又は製造後すぐの使用に比べて、管を14日間保存した場合、管内の負圧が異ならなかったことを示す。実施例3-製造された採血管とマルチウェルストリップとの比較非ガラス採血管の製造の再現性を確認した後、下記の実験を実施して、そのような採血管が、より従来の生体外血液刺激法例えば、少量の血液をウェルに配置し、個別に刺激剤を加えると同様に十分良好に作用するかを評価した。採血管を、上述のとおり製造した。3つの管を、4°C図9のPHA4C1、2、及び3又は室温図9のPHARTで20日間保存した。次いで、血液を、6つの管:対照ヘパリン管、普通のヘパリン管、4つのPHA含有管に採取した。対照ヘパリン管の血液を、マイクロプレートチューブストリップそれぞれ3ウェル、60μl血液/ウェル中でPBS又はPHAにより刺激した。残りの5つの管を37°Cで4時間インキュベートした。種々のmRNAを、既報のとおり、SYBRグリーンリアルタイムPCRを利用して定量化した。簡単に述べると、96ウェルフィルタープレートを、白血球低減膜と組み合わせ、オリゴdT固定化回収プレートの上に置いた。150μLの5mmol/LのTrispH7.4をアプライして、濾過膜を濡らした。120gで、4°Cで1分間遠心分離してTris溶液を膜から除去した後、50μLの刺激された全血試料を各ウェルにアプライし、直ちに120gで、4°Cで2分間遠心分離した。次いで、ウェルを、300μLのリン酸緩衝食塩水で1回洗浄した。2000gで、4°Cで5分間遠心分離してリン酸緩衝食塩水を除去した後、60μLのストック溶解バッファー5g/LのN-ラウロイルサルコシン、4×標準クエン酸緩衝液、10mmol/LのTris-HClpH7.4、1mmol/LのEDTA、1mL/LのIGEPALCA-630NP-40の代替、1.79mol/Lのグアニジンチオシアン酸塩全てSigma製]に、10mL/Lの2-メルカプトエタノールBio-Rad、0.5g/LのプロテイナーゼKPierce、0.1g/Lのサケ精子DNA5PrimeEppendorf/Brinkman、0.1g/Lの大腸菌EscherichiacolitRNASigma、5nmol/Lの特異的リバースプライマーのそれぞれ、及び1010分子/Lの合成RNA34外部対照としてを補ったものを、フィルタープレートの各ウェルに加えた。次いで、プレートを37°Cで10分間インキュベートし、オリゴdT固定化回収マイクロプレートGenePlate;RNAtureの上に置き、2000gで、4°Cで5分間遠心分離した。4°Cで一晩保存した後、マイクロプレートを、100μLの普通の溶解バッファーで3回、次いで150μLの4°Cの洗浄バッファー[0.5mol/LのNaCl、10mmol/LのTrispH7.4、1mmol/LのEDTA]で3回洗浄した。1×逆転写バッファー[50mMのKC1、10mMのTris-HClpH8.3、5.5mMのMgCl2、1nL/μLのTween20]、1.25mMの各デオキシヌクレオシド三リン酸、4単位のrRNasin、及び80UのMMLV逆転写酵素Promega;プライマーなしを含む30μLのバッファーを加え、37°Cで2時間インキュベートすることにより、cDNAを各ウェル中で直接合成した。各30μLの反応物から、4μLのcDNAを384ウェルのPCRプレートに直接移し、5μLのTaqManユニバーサルマスター混合物AppliedBiosystems及び1μLの5μΜの各mRNA又はβアクチンのフォワード若しくはリバースプライマーのそれぞれを加えた。PCRを、95°Cで10分間を1サイクル、次いで95°Cで30秒間、55°Cで30秒間、及び60°Cで1分間を45サイクル、PRISM7900HTAppliedBiosystemsで実施した。各遺伝子を、別々のウェルで増幅した。サイクル閾値Ct、すなわち、特定量のPCR産物蛍光に基づくが生じるサイクルは、分析ソフトウェアSDS;AppliedBiosystemsにより決定した。ΔCtは、PBS処理対照試料の各CtからPHA処理試料の各Ctを引くことにより決定し、増加倍率は、2^-ΔCtにより計算した。図9A~9Dに示されるとおり、採血管は、対照反応に対して同等の結果を示す例えば、PBSストリップと普通の真空管を比較されたい。また、室温で保存されたPHA含有管と4°Cで保存されたものとの間に差違は全く検出されなかった。最後に、試験した遺伝子の全てでβアクチン、インターフェロンγ、インターロイキン2、及びGM-CSF、マルチウェルストリップフォーマットで実施したPHA刺激と、PHA含有採血管内で実施したものとの間で差違は全く検出されなかった。これらの結果は、採血管内の血液の刺激が、マルチウェルストリップフォーマット中での刺激の実施と等しく信頼性があり再現性があることを示す。追加の実験を実施して、血液試料の採取と試料の刺激との間の遅れの効果を決定した。血液を、上述のとおり製造した4つのヘパリン含有真空管に採取した3つの普通の管及び1つのインターフェロンα2b、IFNa2bを含む管。血液を採取した直後、普通の管1つとIFNa2b管を、37°Cのインキュベーターに2時間置いた。追加の普通の管を、直ちに、マルチウェルストリップチューブに等分し、PBS又はIFNa2bそれぞれ3ウェル、60μL血液/ウェルにより37°Cで2時間刺激した。インキュベーション後、各管を-80°Cで保存した。最後の普通の管を4°Cで6時間保存し、次いでIFNa2bによる刺激のためにマルチウェルストリップに等分した。図10A~10Cに示されているとおり、IFNa2b管の性能白三角は、従来のストリップウェル中のIFNa2b刺激の性能白丸と同一であった。対照的に、最初に生体外刺激の前に4°Cで6時間保存した血液は、GIP2及びCXCL10黒四角に関してIFNa2bによる誘導が少ないことが示された。実際、βアクチンのレベルが低下しているので、そのインキュベーションの間にmRNAの分解があったかもしれない図10A。実施例4-刺激後の血液試料の安定性刺激後の試料の安定性を評価するために、血液を、DNR最終濃度10μM、AraC最終濃度100μΜ、又はPBSにより、ストリップウェル中37°Cで4時間刺激し、次いで4°Cで0~3日間保存した。4°Cのインキュベーションの後、試料を-80°Cの冷凍機で、分析まで保存した。これらの実験条件は、本明細書に記載される持ち運び可能なインキュベーション装置中での輸送の間に試料が曝されるだろう、可能性のある条件を表すように設計する。3種のmRNAACTB、p21、及びPUMAを、上述のとおり定量化した。図11A~11Bに示されるとおり、βアクチンはどの薬剤にも誘導されず白い印はPBS対照であり、黒い印はDNR又はAraC刺激である、βアクチンmRNAのレベルは3日にわたって比較的安定であった。図11Aは、DNRがp21に著しい誘導を誘導したことを示す白い三角と黒い三角の間の矢印。類似の結果が、AraC刺激でも得られた図11B。同様に、どちらの薬剤もPUMA発現を誘導した。刺激後の1日の保存の後、p21及びPUMAの発現レベルは、0日のものに類似であった。しかし、刺激後の3日間の保存後に、p21及びPUMAの両方のレベルは、両刺激剤に関して低下したようであるより高いCt値。刺激後1日でやはり明らかな上昇がある。したがって、これらの結果は、いくつかの実施形態において、刺激後の2日間の保存が可能であることを示す。しかし、いくつかの実施形態において、刺激後の血液は、4°Cで1日間保存できる。誘導の時間経過を、2つの異なるインキュベーション温度で評価した。これは、試料がインキュベーション温度に曝されるがそれでも信頼性があり一貫した遺伝子発現データを提供できる時間を評価するものである。血液を、PHA、IFNa2b、又はPBS三連でにより、ストリップウェル中で、37°C又は42°Cで、0~9時間刺激し、次いで-80°Cで凍結保存した。これらの温度は、本明細書に開示される持ち運び可能なインキュベーション及び保存装置のいくつかの実施形態において使用される小型の持ち運び可能なヒーターの操作範囲を表す。ACTB、IL2、及びCXCL9mRNAを定量化した。図12A及び12Dに示されるとおり、40°C又は37°Cのいずれかでの血液試料のインキュベーションは、刺激剤にかかわらず、βアクチンの発現を変えなかった。図12B及び12Eは、PHAを含むインキュベーションによるIL-2mRNAの誘導が、42°Cで実施されようと37°Cで実施されようと類似であることを示す。さらに、1時間と9時間の刺激の間の任意の点で実施されると、発現レベルは類似である。同様に、図12C及び12Fにおいて、CXCL-9は、インキュベーション温度又はインキュベーションの期間にかかわらず、インターフェロンにより類似の程度誘導された。このため、いくつかの実施形態において、利用される刺激条件の点で、多大な柔軟性が存在する。これにより、1時間のインキュベーションに対して9時間のインキュベーション期間においては、より長い距離が網羅されうるので、幅広い地点からの試料の発送が可能になる。また、いくつかの実施形態において、幅広い範囲のインキュベーション時間があるとすれば、利用される加熱装置の種類の選択肢が広がるので、この柔軟性は加熱要素の選択において有利である。図13A及び13Bは、PHA又はIFNαにより刺激され、本明細書に開示された持ち運び可能な装置又は制御されたインキュベーター種々の温度ででインキュベートされた場合のIL2又はCXCL9の誘導のレベルの比較を表す。示されるとおり、IL2及びCXCL9誘導の両方とも、制御されたインキュベーターに対して持ち運び可能な装置を使用してインキュベートした場合、著しく異なってはいなかった。これは、やはり、血液試料の生体外刺激を実施するのに利用できる温度及び時間上記に開示されるとおりにおける柔軟性の程度を表す。図14は、それぞれ6つの採血管の1つに装填され、電池作動式熱源に接続した銅の箱に配置された、6つの温度記録装置から記録した温度プロファイルを表す。銅の箱は、2つのブルーアイスパックと共に、上述の持ち運び可能な装置中に配置した。これらのデータは、ブルーアイスの存在下ですら、銅の箱内の温度は、熱源の結果として、40°Cに2時間維持されたことを表す。熱源がきれると、温度は2°Cに下がり、16時間まで維持された。管同士のはっきり分かる変動は全くなく、銅の箱内の試料管の位置がインキュベーション温度に影響しないことを示す。本発明の範囲から逸脱することなく、上述の装置及び方法に、種々の省略、追加、及び修正が可能であることが、当業者には認識されるだろうが、そのような修正及び変更の全ては、添付される請求項により定義される本発明の範囲内にあるものとする。