"赤血球用の採取容器と、酸素又は酸素及び二酸化炭素減損デバイスと、嫌気性条件下で赤血球を保存するための保存容器と、前記採取容器を前記酸素又は酸素及び二酸化炭素減損デバイスに接続し、該酸素又は酸素及び二酸化炭素減損デバイスを前記保存容器に接続する管体と、を備え、保存される前記赤血球をガンマ線照射デバイス又はX線照射デバイスを用いて照射し、次いで赤血球を前記保存容器内に保存するようにする、血液保存システム。前記嫌気性条件が、20よりも低いヘモグロビン酸素飽和度SO2として測定される、ことを特徴とする請求項1に記載の血液保存システム。前記ヘモグロビン酸素飽和度が5よりも低い、ことを特徴とする請求項2に記載の血液保存システム。前記ヘモグロビン酸素飽和度が3よりも低い、ことを特徴とする請求項3に記載の血液保存システム。前記酸素又は酸素及び二酸化炭素減損デバイスが、カートリッジと、前記カートリッジ内でその入口から出口まで延びて赤血球を受容し且つ輸送するよう適合された複数の中空繊維又はガス透過性フィルムと、前記カートリッジ内で前記複数の中空繊維に隣接しその間に充填される酸素捕捉剤か、又は酸素捕捉剤及び二酸化炭素捕捉剤かの何れかと、を含む、ことを特徴とする請求項1に記載の血液保存システム。前記ガンマ線又はX線照射デバイスが、前記赤血球の嫌気性処理の前に赤血球を照射する、ことを特徴とする請求項1に記載の血液保存システム。前記ガンマ線又はX線照射デバイスが、嫌気性処理の後に前記赤血球を照射する、ことを特徴とする請求項1に記載の血液保存システム。前記採取容器と前記酸素又は酸素及び二酸化炭素減損デバイスとの間に配置された白血球除去フィルタを更に備える、請求項1に記載の血液保存システム。前記採取容器と連通した添加剤溶液容器を更に備える、請求項1に記載の血液保存システム。前記採取容器と連通した血漿容器を更に備える、請求項1に記載の血液保存システム。赤血球を保存するための方法であって、赤血球から酸素又は酸素及び二酸化炭素を除去し、これにより嫌気性赤血球を生成する段階と、前記嫌気性赤血球をガンマ線照射又はX線照射の何れかによって照射し、これにより照射済み嫌気性赤血球を生成する段階と、前記照射済み嫌気性赤血球を保存する段階と、を含む方法。前記嫌気性赤血球が、20よりも低いヘモグロビン酸素飽和度SO2を示す、請求項11に記載の方法。前記ヘモグロビン酸素飽和度が5よりも低い、請求項12に記載の方法。前記ヘモグロビン酸素飽和度が3よりも低い、請求項13に記載の方法。前記酸素又は酸素及び二酸化炭素が、酸素又は酸素及び二酸化炭素減損デバイスによって除去され、前記酸素又は酸素及び二酸化炭素減損デバイスが、カートリッジと、前記カートリッジ内でその入口から出口まで延びて赤血球を受容し且つ輸送するよう適合された複数の中空繊維又はガス透過性フィルムと、前記カートリッジ内で前記複数の中空繊維に隣接しその間に充填されるある量の酸素捕捉剤又は酸素捕捉剤及び二酸化炭素捕捉剤の両方と、を含む、請求項11に記載の方法。前記赤血球から酸素/二酸化炭素を除去する段階の前に白血球除去フィルタリング段階を更に含む、請求項11に記載の方法。前記赤血球から酸素又は酸素及び二酸化炭素を除去する段階の前に、赤血球を添加剤溶液で処理する段階を更に含む、請求項11に記載の方法。前記照射済み嫌気性赤血球が、嫌気性条件下で約1°Cから約6°Cの間の温度で保存される、請求項11に記載の方法。赤血球を保存するための方法であって、赤血球をガンマ線照射又はX線照射の何れかによって照射し、これにより照射済み赤血球を生成する段階と、前記照射済み赤血球から酸素又は酸素及び二酸化炭素を除去し、これにより照射済み嫌気性赤血球を生成する段階と、前記照射済み嫌気性赤血球を嫌気性条件下で保存する段階と、を含む方法。前記嫌気性赤血球が、20よりも低いヘモグロビン酸素飽和度SO2を示す、請求項19に記載の方法。前記ヘモグロビン酸素飽和度が5よりも低い、請求項20に記載の方法。前記ヘモグロビン酸素飽和度が3よりも低い、請求項21に記載の方法。嫌気性条件又は嫌気性且つCO2減損条件下でのRBCのガンマ線照射又はX線照射のため、並びに酸素及び/又はCO2減損デバイスを用いた嫌気性条件又は嫌気性及び/又はCO2減損条件下でのかかるRBCの長期冷却保存のための方法及びシステム。血小板と共に又は血小板を伴わずに血漿を除去し、添加剤溶液例えば、栄養剤及び/又は代謝補助剤を濃縮RBCに添加して、白血球及び/又は血小板を白血球除去フィルタによってフィルタリング除去し、フィルタリング済みRBCから酸素及び/又はCO2を除去し、酸素及び/又はCO2フィルタリング済みRBCを保存前又は最中の何れかにガンマ線照射又はX線照射するための方法及びシステム。ガンマ線照射の好ましい範囲は、最小で約25Gyと50Gyとの間である。20よりも低い、より好ましくは5よりも低い、最も好ましくは3よりも低いSO2ヘモグロビン酸素飽和度として定義された嫌気性条件又は嫌気性且つCO2条件1°Cまでの外気温の下でRBCをガンマ線照射又はX線照射する。ガンマ線照射又はX線照射された嫌気性条件又は嫌気性且つCO2条件の何れかの下でRBCを20よりも低い、より好ましくは5よりも低い、最も好ましくは3よりも低いSO2ヘモグロビン酸素飽和度として定義された嫌気性条件下で1~6°Cで長期間保存する。20よりも低いSO2ヘモグロビン酸素飽和度、より好ましくはSO2<5、最も好ましくはSO2<3で、pCO2<10mmHg、pCO2<5mmg、pCO2<1mmHgとして定義された嫌気性条件又は嫌気性且つCO2減損条件1°Cまでの外気温下でRBCをガンマ線照射又はX線照射する。好気性条件1°Cまでの外気温下でRBCをガンマ線照射又はX線照射し、次いで照射済みRBCから酸素又は酸素及び二酸化炭素を20よりも低いSO2ヘモグロビン酸素飽和度、より好ましくはSO2<5、最も好ましくはSO2<3、且つpCO2<10mmHg、pCO2<5mmg、pCO2<1mmHgとして定義されたレベルまで除去する。好気性条件下でのガンマ線照射又はX線照射、並びに酸素又は酸素及び二酸化炭素の除去は、血液を長期の保存状態に置く前、又は採血の24時間以内、採血の後1日と7日の間、或いは7日よりも後に実施することができる。1週間を超えて保存された血液として定義される古い血液を用いて、かかる血液を、好気性条件1°Cまでの外気温下でRBCを照射するガンマ線又はX線に露光し、次いで照射済みRBCから酸素又は酸素及び二酸化炭素を20よりも低いSO2ヘモグロビン酸素飽和度、より好ましくはSO2<5、最も好ましくはSO2<3、且つpCO2<10mmHg、pCO2<5mmg、pCO2<1mmHgとして定義されたレベルまで除去する。1週間を超えて保存された血液として定義される古い血液を用いて、酸素及び二酸化炭素のレベルが20よりも低いSO2ヘモグロビン酸素飽和度、より好ましくはSO2<5、最も好ましくはSO2<3、且つpCO2<10mmHg、pCO2<5mmg、pCO2<1mmHgとして定義されたレベルであるところで古い血液から酸素又は酸素及び二酸化炭素を除去し、かかる血液をガンマ線照射又はX線照射に露光する。ガンマ線又はX線で照射又は予備照射されたCO2減損を伴うか、又は伴わないかの何れかの嫌気性条件下でRBCを、20よりも低い、より好ましくはSO25よりも低い、最も好ましくは3であるSO2ヘモグロビン酸素飽和度、且つpCO2<10mmHg、pCO2<5mmg、pCO2<1mmHgとして定義された嫌気性条件又は嫌気性且つCO2減損条件下に、1~6°Cで長期間保存する。好ましい実施形態は、赤血球用の採取容器と、酸素減損デバイス又は酸素/二酸化炭素減損デバイスと、採取容器を酸素減損デバイス又は酸素/二酸化炭素減損デバイスとガンマ線照射又はX線照射して嫌気性条件又は嫌気性及びCO2減損条件下に長期間保存することができる赤血球用の保存容器とに接続する管体と、を備える血液保存システムを含む。好ましくは、嫌気性条件又は嫌気性及びCO2条件は、20よりも低い、好ましくは約5又はそれ以下、最も好ましくは約3又はそれ以下のヘモグロビン酸素飽和度SO2として測定される。酸素又は酸素及び二酸化炭素減損デバイスは、カートリッジと、カートリッジ内でその入口から出口まで延びて赤血球を受容し且つ輸送するよう適合された複数の中空繊維又はガス透過性フィルムと、カートリッジ内で複数の中空繊維に隣接しその間に充填されるある量の酸素捕捉剤又は酸素捕捉剤と二酸化炭素捕捉剤との両方と、を含む。好ましくは、酸素又は酸素及び二酸化炭素減損デバイスは、カートリッジと、カートリッジ内でその入口から出口まで延びて赤血球を受容し且つ輸送するよう適合された中空繊維又はガス透過性フィルムと、を備え、中空繊維の間に不活性ガスを流すことによって中空繊維の外側に低酸素環境又は低酸素及び二酸化炭素環境が作り出されるようになる。更に血液保存システムは更に、採取容器と酸素/二酸化炭素減損デバイスとの間に配置された白血球除去フィルタを備える。血液保存システムは更に、採取容器と連通した添加剤溶液容器を備える。血液保存システムは更に、採取容器と連通した血漿容器を備える。赤血球を保存するための方法であって、赤血球から酸素又は酸素及び二酸化炭素を除去して嫌気性赤血球を生成する段階と、ガンマ線又はX線の何れかを用いて照射されたRBCを保存し、これにより照射済み嫌気性赤血球を生成する段階と、照射済みの嫌気性赤血球又は嫌気性且つCO2減損赤血球を保存する段階と、を含む方法。照射済みの嫌気性赤血球又は嫌気性且つCO2減損赤血球は、好ましくは、嫌気性条件下に約1°Cから約6°Cの間の温度で保存される。本開示はまた、嫌気性又は嫌気性且つCO2減損の保存及び/又はガンマ線照射又はX線照射の前又はその開始時に、酸素O2に加えて二酸化炭素CO2を除去するデバイス及び方法を提供する。本開示は、酸素吸着剤又は酸素及び二酸化炭素吸着剤をフィルタ又は膜との組み合わせで有する酸素減損デバイス又は酸素/二酸化炭素減損デバイスを組み込んで、保存バッグへの輸送中に血液から酸素又は酸素及び二酸化炭素を剥離し、酸素/二酸化炭素減損血液が、保存の前又はその最中の何れかにガンマ線照射又はX線照射される採血システムを提供する。更に本開示は、採取された赤血球から酸素又は酸素及び二酸化炭素を減損させるシステムであって、任意選択的な添加剤溶液と、酸素又は酸素及び二酸化炭素減損デバイスと、赤血球をガンマ線照射又はX線照射の後に酸素減損状態又は酸素及び二酸化炭素減損状態に維持する血液保存バッグと、を含むシステムを提供する。本発明の開示及びその特徴並びに利点は、添付図面を参照しながら以下の詳細な説明からより明らかになるであろう。RBCは、自らの生存のために酸素を必要としない。RBCは、嫌気性条件又は嫌気性及びCO2減損条件下で血液銀行の冷蔵庫1~6°C内に保存された場合に、従来の方法で保存された対照と比較して、6週間保存後に著しく改善された輸血後回収率を示すことがこれまでに示されている。嫌気性条件又は嫌気性/CO2減損条件下での保存障害の低減機序については、これまでに説明されており、直接的な証拠が示されている。このことは、少なくともひとつには、O2の存在下での冷却保存中にROSによって引き起こされる酸化損傷の低減に起因する。ガンマ線照射又はX線照射は、処理済みRBCに対する酸化損傷を悪化させるので、照射されたRBCを嫌気性条件下及び任意選択的にCO2減損条件下で保存することによって損傷が増大することは予想されず、更にこれらの反応を付勢するO2を取り除くことによって照射中に発生するROSにより生じる損傷を阻止することが期待される。ガンマ線照射又はX線照射の有効性は、酸素の存在に依存しない。対照的に、嫌気性条件は、DNAに対する損傷を引き起こす従って、リンパ球の増殖を抑制する上でより有効であることが示されている。更に、ガンマ線照射又はX線照射の最中及び/又は直後のO2の不在は、ガンマ線又はX線による水の放射線分解によって生成されるヒドロキシルラジカル及びROSによって誘発されるRBCに対するO2付勢の酸化損傷を低減することになる。図面、特に図1aを参照すると、使い捨て血液嫌気性保存システムが示されており、参照番号10を用いて参照される。血液保存システムは、酸素/二酸化炭素減損デバイス100OCDD100と、嫌気性血液保存バッグ200と、添加剤溶液バッグ300とを含む。OCDD100は、そこを通過する赤血球から酸素及び/又は二酸化炭素を除去する。本システムはまた、白血球除去フィルタ400を含む。従来、採血プロセスに関係する構成要素は、静脈切開針410、抗凝血剤を収容する採取バッグ420、及び血漿を収容するバッグ430がある。管体によって血液保存システム10の様々な構成要素を様々な構成で接続することができる一実施形態が図示されている。管体440は、採取バッグ420を白血球除去フィルタ400と接続する。管体441は、添加剤溶液バッグ300を採取バッグ420と接続する。管体442は、血漿バッグ430を採取バッグ420と接続する。管体443は、白血球除去フィルタ400をOCDD100と接続する。管体414は、OCDD100を血液保存バッグ200と接続する。血液保存システム10は、好ましくは1回使用の使い捨て低コストシステムである。フィルタリングされ、酸素減損又は酸素及び二酸化炭素減損された血液は、OCDD100から血液保存バッグ200に通過する。バッグ200内に保存された血液は、保存中にデバイス453によってガンマ線照射及び/又はX線照射されることになる。酸素減損又は酸素及び二酸化炭素減損されたRBCを収容するバッグ200は、デバイス453内に入れられ、ガンマ線放射線及び/又はX線放射線に露光される。或いは、図1bに示すように、採取バッグ421内に保存された嫌気性処理前血液は、OCDD100を通ってバッグ200内に保存する前に、デバイス445によってガンマ線照射及び/又はX線照射することができる。図1bでは、バッグ420はまた、白血球除去フィルタ400を通過する前に、照射デバイス445内でガンマ線照射及び/又はX線照射することができる。酸素減損デバイス又は酸素/二酸化炭素減損デバイス100は、RBCを血液保存バッグ200内に保存する前に、採取されたRBCから酸素を除去する。かかる酸素のうちの99よりも多くが静脈血中でヘモグロビン結合されるので、RBC中の酸素含有量は、酸化ヘモグロビンから減損させなければならない。好ましくは、酸素飽和度は、採血から48時間以内に4未満にまで低減されることになる。酸素減損は、好ましくは室温で達成される。ヘモグロビンに対する酸素の親和性は温度に大きく依存し、37°Cにおいて26mmHgのp50は、4°Cにおいて~4mmHgまで降下する。更に、O2親和性Kaのこの上昇は、主にO2解離速度k-offの低下に起因し、RBCが4°Cまで冷却されると、非実用的に低い酸素除去速度を生じる。従って、この親和性は酸素剥離に制約条件を課し、RBCが1°Cから6°Cの保存温度まで冷却される前に酸素剥離を完了することが好ましいとすることができる。酸素減損に加えて、二酸化炭素減損は、赤血球中のDPGレベルを上昇させる有益な効果がある。二酸化炭素は、RBCの内部の血漿中にHCO3イオン炭酸と平衡状態で存在する。二酸化炭素は、主に、RBC/血漿混合物中に炭酸として溶解し、RBCの内部の炭酸脱水酵素によってCO2と炭酸との間で急速な平衡が維持される。二酸化炭素は、RBC膜を通って自由に透過可能であるが、RBC及び血漿内部のHCO3は、陰イオン交換体バンド3タンパク質によって急速に平衡化される。CO2がRBC懸濁液から除去されると、RBC内部及び懸濁媒質の公知のアルカリ化が生じる。このアルカリ化は、RBCの内外のHCO3の除去によって生じ、細胞基質のHCO3は、炭酸脱水酵素によってCO2に変換されて除去され、他方、血漿のHCO3は、RBC内部の陰イオン交換によって除去される。RBC内部のpHが高いほど解糖速度が高くなり、これによりATPレベル及びDPGレベルが高くなることは公知である。ATPレベルは、AR/CO2中でより高いp<0.0001。DPGは、アルゴンパージされた群においてのみ2週間以上維持されたp<0.0001。高い解糖速度はまた、嫌気性条件の結果としてのヘモグロビンの脱酸素化時の細胞基質のないDPGの代謝調整及び隔離による主要多糖分解酵素の脱抑制によって予測される。DPGは、ヘモグロビンの十分な脱酸素化にかかわらず、対照群とAr/CO2群の両方において同じ速度p=0.6で失われたが、OFAS3添加剤を用いた場合には極めて高いATPレベルが得られた図12a~図12d。図面、特に図2aを参照すると、使い捨て血液嫌気性保存システムの別の実施形態が示されており、参照番号500を用いて参照される。嫌気性変換システムは、酸素減損デバイス又は酸素/二酸化炭素減損デバイス515OCDDと嫌気性血液保存バッグ528とを含む。OCDD515は、そこを通過する赤血球から酸素又は酸素及び二酸化炭素を除去する。管体は、血液保存システム500の様々な構成要素を接続する。管体512は、添加剤溶液例えば、AS1、AS3、AS5、SAGM、MAPS等を用いることによって調製されたRBC濃縮液に接続され、このRBC濃縮液は、採取バッグ510からOCDD515まで通過させることによってバッグ528内に保存される。管体518及び520は、OCDD515を血液保存バッグ528と接続する。血液保存システム500は、好ましくは1回使用の使い捨て低コストシステムである。酸素減損及び/又は二酸化炭素減損された血液は、デバイス553によって血液保存バッグ528内でガンマ線照射及び/又はX線照射され、その後、後の輸血のために保存される。或いは、図2bに示すように、採取バッグ510内の血液は、酸素減損又は酸素及び二酸化炭素減損並びに低温保存の前にデバイス551によってガンマ線照射又はX線照射することができる。図2bは、血液バッグ510が、古い例えば2日前の血液を含む状況に当てはまり、すなわちこの場合、照射されて酸素が減損され、或いは酸素及び又は二酸化炭素が減損されて保存される。図3を参照すると、酸素減損デバイス又は酸素/二酸化炭素減損デバイスOCDD101は、酸素吸着剤110を含む。OCDD101は、酸素吸着剤110及び一連の中空繊維115を収容する、使い捨てカートリッジ105である。酸素吸着剤110は、無毒性の無機塩及び/又は有機塩と、第一鉄又は酸素に対して高い反応性を有する他の材料との混合物である。酸素吸着剤110は、O2に対して著しい吸収容量5mlO2/gよりも高いを有する粒子から作られ、カートリッジ105の内部を0.08mmHg未満のP02に相応する0.01未満に維持することができる。酸素吸着剤110は、遊離しているか、又は酸素透過性外皮に収容されている。本開示のOCDD101は、単位量の血液からおよそ100mLの酸素を減損させなければならない。図3のOCDD内でRBCから酸素及び任意選択的に二酸化炭素が剥離された後、RBCは、血液保存バッグ200内に保存される。添加剤溶液300中に懸濁するRBCの酸素含有量は、冷却保存庫内に入れる前にSO2が4に等しいか又はそれ以下になるまで低減しなければならない。更に、酸素減損されたRBCは、保存期間全体を通して嫌気性状態及び低二酸化炭素状態に保たなければならない。RBCは、図3の中空繊維115として形成することができる酸素透過性フィルム又は膜を通過する。膜又はフィルムは、平坦なシート又は中空繊維の形態で構築することができる。酸素透過性フィルムは、高酸素浸透率を有することができる無孔性材料ポリオレフィン、シリコーン、エポキシ、ポリエステル等とすることができ、酸素透過性膜は、疎水性多孔質構造体である。酸素透過性膜は、ポリマー例えば、ポリオレフィン、テフロン、PVDF、又はポリサルフォン又は無機材料例えばセラミックで構築することができる。酸素減損は、RBCが中空繊維115を通過する時に起こる。酸素透過性フィルム又は酸素透過性膜は、シート又は中空繊維15に押し出すことができる。これに応じて、中空繊維115及びシートは置き換え可能に用いることができる。OCDDは、酸素を除去し、そこを通る一定の血液流を維持するために、大きな表面積を有する単純な構造を与える。酸素減損又は除去は、酸化鉄を形成するための酸素吸着剤110中の第一鉄と雰囲気酸素との不可逆反応によって達成される。OCDD101は、酸素除去のために撹拌を必要とせず、必要に応じて採血システムの一部として遠心分離に耐えるように容易に製造することができる。図7aから図7c及び図8aから図8cを参照すると、フラッシング減損デバイスの実施例が開示されている。減損デバイスは、適切な組成のフラッシングガスを供給することによって、O2及びCO2、又はCO2のみ、或いはO2と特定のレベルのCO2とを減損させるように機能する。減損デバイスに適するガスは、例えば、Ar、He、N2、Ar/CO2、又はN2/CO2である。図9aから図9c及び図10aから図10cは、捕捉減損デバイスを更に開示している。減損は、捕捉剤又は吸着剤を用いて外部ガスを用いずに行われる。しかしながら、両方の種類の減損デバイスにおいて、二酸化炭素減損と酸素減損との併用は、血液保存バッグ内への保存の前にDPG及びATPそれぞれを増加させるのに有効である。図7aから図7cを参照すると、減損デバイス20が示されている。減損デバイス20は、赤血球が通過して流れるおよそ5000本の複数の繊維25を含む。複数の繊維25は、プラスチック製シリンダ30によって囲まれる。プラスチック製シリンダ又はカートリッジ30は、血液から炭素及び/又は酸素を除去するために、上述のようなフラッシングガス又はフラッシングガスの組み合わせを通過して供給する吸気口35及び排気口40を含む。減損デバイス20の仕様を下記の表1の2番目の列に示す。表1図8aから図8cを参照すると、減損デバイス45が示されている。減損デバイス45は、図7aから図7cのデバイス20と同様に、赤血球が通過して流れるおよそ5000本の複数の繊維50を含む。複数の繊維50は、プラスチック製シリンダ55によって囲まれる。プラスチック製シリンダ55は、血液から酸素を除去する、又は酸素及び二酸化炭素を除去するために、上述のようなガス又はガスの組み合わせを通過して供給する吸気口60及び排気口65を含む。減損デバイス45の仕様を上記の表1の3番目の列に示す。デバイス5の有効減損表面積は、デバイス45がデバイス20の2倍長いので、デバイス20の2倍である。図9aから図9cは、O2又はO2及びCO2両方の何れかに対する捕捉材料を収容するコア75を有する減損デバイス70を開示している。コア75は、極めて低い液体透過率を有するガス透過性フィルムで充填される。コアの周囲には中空繊維80が巻かれ、プラスチック製シリンダ82は、中空繊維80を収容し包囲する。この特定の実施形態では、減損のための有効表面積は、下記の表2の2番目の列に示すように、およそ0.8796m2である。表2図10aから図10cは、極めて低い液体透過率を有するガス透過性フィルムに包囲された繊維束87を含む減損デバイス85を開示している。繊維束87は、O2又はO2及びCO2両方の何れかに対する捕捉剤材料89によって囲まれる。繊維束87及び捕捉剤材料89は、プラスチック製シリンダ90内に収容される。減損のための有効表面積は、上記の表2の3番目の列に示しているように、およそ0.8796m2である。図11は、フラッシング減損デバイス20及び45並びに捕捉減損デバイス70及び85の性能のプロットである。図11のデータは、異なる流速を生じさせるために、様々な水頭高さで、ヘマトクリット値62プールされた3単位のpRBC及び21°Cの条件を用いてプロットした。デバイス79及びデバイス85において、酸素/二酸化炭素捕捉剤MultisorbTechnologies、米国ニューヨーク州バッファローをそれぞれ5w/w及び12w/wの水蒸気を加えることにより活性化した。データは、流速1分間当たりのRBC懸濁液グラム数対pO2mmHgでプロットしたものである。本明細書で開示した酸素/二酸化炭素減損デバイスでは、複数のガス透過性フィルム/膜が複数の中空繊維に置き換えることができる。フィルム及び繊維は、赤血球を受容して輸送することができる限り、線形又は縦長、螺旋、或いはコイル等の何れかの適切な構成でカートリッジ内に充填することができる。図11は、デバイス45及び85を用いて最も低い酸素飽和度が得られることを示している。デバイス45は、繊維50の長さに沿ってガスに暴露される大きな有効表面積を示している。デバイス85はまた、捕捉材料に対する長い暴露表面積を有する。デバイス85は、捕捉材料89によって囲まれる束87を有する。束87の間で捕捉材料89によって占有される空間は、繊維束87内に収容される赤血球からの酸素及び二酸化炭素の分散を促進し、従って、赤血球からの酸素及び二酸化炭素の捕捉を助勢する。減損デバイスの更なる使用は、輸血の前に純酸素又は空気をフラッシングすることによって酸素及び/又は二酸化炭素を付加して戻すことである。この使用は、輸血血液を再酸素化するには肺の容量が十分ではない大量の輸血、又は鎌状赤血球症等のような特殊な場合におけるものである。同様に、減損デバイスは、患者の要求に応じた輸血血液の最適なレベルを得るために、患者の酸素及び二酸化炭素依存要求の減損の中間レベル又は状態を得るのに用いることができる。図4を参照すると、本開示の好ましい実施形態による血液保存バッグ200が提供されている。血液バッグ200は、内側の血液適合バッグ250好ましくは塩化ポリビニルPVCと、外側のバリアフィルムバッグ255とを有する。バッグ250の材料はRBCに適合する。内側のバッグ250と外側の酸素バリアフィルムバッグ255との間には、酸素/二酸化炭素吸着剤110を収容するポケットが配置される。バリアフィルムバッグ255は、内側のバッグ250の表面全体に積層される。吸着剤110は、代替的にポーチ又はポケットと呼ばれるサッシェ260内に収容される。吸着剤110は、バッグ200に出入りする管体440間、特に内側のバッグと外側の酸素バリアフィルムバッグ255との間に最適に設置される。この場所は、これらの2つのバッグの間にある酸素が捕捉又は吸収されるのを確実にすることになる。酸素吸着剤は、理想的にはポーチ又はポケット260内に設置され、RBCと接触しない。酸素吸着剤は、CO2の捕捉剤又は吸着剤と組み合わされ、吸着剤110が、酸素と二酸化炭素の両方を同時に減損させることを可能にすることができる。図5a及び図5bを参照すると、血液保存バッグ201及び202は、長期の保存期間にわたってRBCを保存するように構成される。内側の血液保存バッグ205は、好ましくはDEHP可塑化PVCから作られ、RBCと接触している。DEHP可塑化PVCは、シリコーンと比較すると、酸素に対する透過率がおよそ200倍小さい。しかしながら、PVCは、保存期間全体を通してRBCの嫌気性状態を維持する酸素バリア壁としては不十分である。従って、血液保存バッグ201及び202は、内側の血液バッグ205の外面に積層される外側の透明の酸素バリアフィルム206例えばナイロンポリマーを用いて製作される。この手法並びに図3に示したものは、血液接触表面に許容されるPVC細胞安定化のためのDEHPを供給するを用いると同時に、長期の保存中にバッグ内への酸素の進入を阻止する。図5aでは、酸素透過性のRBC適合膜内に包囲された酸素/二酸化炭素吸着剤110を収容するサッシェ210は、積層されたPVCバッグ205の内部に包囲され、RBCと接触している。サッシェ外皮210は、好ましくは、生体適合性材料からなる高い酸素透過率を有するシリコーン材料又はシロキサン材料から作られる。サッシェ外皮210は、0.13mm厚よりも薄い壁厚を有し、O2透過性が律速段階にならなくなるのを確実にする。PVCバッグ205はまた、二酸化炭素捕捉剤を収容することができる。図5bを参照すると、バッグ202は、図4aのバッグ201と同様の構成を有する。しかしながら、バッグ202は、PVCバッグ205の内部に包囲された大きな吸着剤215を有する。大きな吸着剤215は、好ましくは、長期の保存中に酸素を急速に吸収するために櫛状構成を有する。図4a及び図4bの積層バッグの利点は、RBCがバッグ内に嫌気性保存されると、更なる特殊な処理が必要とされない点である。同様に、バッグ202は、酸素捕捉能力に加えて、二酸化炭素捕捉をもたらす二酸化炭素捕捉剤を収容することができる。図6a及び図6bの実施形態を参照すると、RBC保存に対する嫌気性保存環境を維持するために、RBCは、2次バッグ301及び302それぞれに保存される。2次バッグ301及び302は、RBCを嫌気性状態に維持するのに十分な酸素バリアとして動作するPVC血液バッグ305及び320それぞれの能力不足を補償する透明な酸素バリアフィルム例えばナイロンポリマーである。2次バッグ301及び302は、酸素バリアフィルム、好ましくは低い酸素透過率を有するナイロンポリマー又は他の透明な可撓性フィルムで作られる。図6aを参照すると、緩慢に拡散する酸素を除去するために、PVCバリアバッグ305と2次バッグ306との間に、小さな酸素/二酸化炭素吸着剤310が配置されている。図6aは、この実施形態では2次バッグ306がバッグ305から分離されてバッグ305に接合されないことを除いて、図4の血液バッグの好ましい実施形態と同様である。ポートを含むPVCバッグ305は、2次バリアバッグ305内に包囲される。酸素吸着剤310は、任意選択的に、酸素捕捉能力と二酸化炭素捕捉能力の両方を与えるために二酸化炭素捕捉剤を含むことができる。図6bを参照すると、2次バッグ302は、PVCバッグ320の内部に大きなサッシェ325を収容する。サッシェ325には、酸素吸着剤又は酸素/二酸化炭素吸着剤110の何れかが充填される。サッシェ325は、表面積を増加させる表面テキスチャを有する成形要素である。サッシェ325は、急速な酸素減損又は酸素/二酸化炭素減損のために櫛状幾何形状を有する。サッシェ325は、RBCの冷却及び保存の前に、図3のOCDDの代わりにRBCから酸素又は酸素/二酸化炭素を急速に剥離する役割を果たす。しかしながら、この構成では撹拌が必要であり、従って、サッシェ325は、大きな表面積、高い酸素透過率又は酸素/二酸化炭素透過率、並びに成分調製中の遠心分離段階及び長期の保存に耐える機械的強度を有さなければならない。サッシェ325は、好ましくは、表面積を増加させる表面のテキスチャを有して0.15mm厚のシリコーン膜のような材料から作られる。サッシェ325は、PTFE又は他のフッ化ポリマーのような材料から作ることができる。サッシェ325は、例えば4×6の矩形のような矩形形状を有することができるが、嫌気性を維持する他のサイズも可能である。サッシェ325は、酸素及び二酸化炭素捕捉能力を与えるために、酸素捕捉剤に加えて二酸化炭素捕捉剤を含むことができる。図6a及び図6bの実施形態は、図6bのサッシェ325を除いて既製の構成要素から容易に作られる。何れかの試験においてRBCにアクセスするためには、2次バッグ301及び302を開放しなければならない。ユニットが短時間内に輸血されない限り、RBCは、更に保存するために新しい吸着剤で再シールしなければならないDEHPで可塑化されたPVCは、酸素に対して比較的低い透過率を有するので、保存バッグの1日の空気暴露は、血液を判別できる程酸素化することにはならない。図5a、図5b、図6a、及び図6bでは、PVCバッグは、好ましくは、ゾルゲル法を用いて形成されたSiO2層等の酸素バリアフィルムで形成される。シート材料の一部分は、高周波シーラー等の標準的な熱シール機器上でシールされることになる。押し出しシートにおいて材料選択肢を得ることができ、各々が酸素バリア、積層完全性、及びシール強度/完全性について試験される。上述の幾つかの実施形態の各々において、バッグ300からの添加剤溶液は、RBCからの酸素及び二酸化炭素の剥離が用いられる前に供給される。添加剤溶液300は、好ましくは、組成:アデニン2mmol/L、グルコース110mmol/L、マンニトール55mmol/L、NaCl26mmol/L、Na2HPO412mmol/Lのクエン酸を含み、pHは6.5である。添加剤溶液300は、好ましくは酸性添加剤溶液OFAS3であるが、酸素/二酸化炭素減損保存を向上させることが示されている他の同様の添加剤溶液を用いることもできる。OFAS3は、本明細書で開示するように、高いATPレベル及び良好な生体内回収率を示した。OFAS3は好ましい添加剤溶液であるが、同様の機能を提供する他の溶液を用いこともできる。或いは、AS1、AS3、AS5、SAGM、及びMAPS等の当該技術分野で現在使用されている添加剤溶液を用いることもできる。添加剤溶液は、保存中のRBCの急激な劣化を防ぐのに役立ち、通常はRBCが嫌気性状態にされる前に添加される。これに加えて、OCDD並びに保存バッグ100及び200は、使い捨て嫌気性血液保存システムの他の構成要素すなわち、図1aにおける白血球除去フィルタ400を含み、その上流にある全ての項目とは独立して製造できることを想定している。保存バッグ内への保存の前に、RBCから酸素を除去すること、又は血液から酸素及び二酸化炭素を剥離することは本開示の範囲内にある。血液バッグ内への保存の前に、酸素捕捉剤を用いてRBCから酸素を除去することができる。本明細書で用いる酸素捕捉剤は、使用条件下で酸素と不可逆的に結合する又は組み合わされる材料である。例えば、酸素は、この材料の何れかの成分と化学反応し、別の化合物に変換することができる。結合酸素の解離速度がゼロである何れかの材料は、酸素捕捉剤としての役割を果たすことができる。酸素捕捉剤の実施例は、鉄粉末及び有機化合物を含む。本明細書において用語酸素吸着剤は、酸素捕捉剤と同義的に用いることができる。本明細書で用いる二酸化炭素捕捉剤は、使用条件下で二酸化炭素と不可逆的に結合又は組み合わされる材料である。例えば、二酸化炭素は、この材料の何れかの成分と化学反応して、別の化合物へと変換することができる。結合二酸化炭素の解離速度がゼロである何れかの材料は、二酸化炭素捕捉剤としての役割を果たすことができる。本明細書における用語二酸化炭素吸着剤は、二酸化炭素捕捉剤と同義的に用いることができる。例えば、酸素捕捉剤及び二酸化炭素捕捉剤は、MultisorbTechnologies米国ニューヨーク州バッファロー又はMitsubishiGasChemicalCo日本国東京都によって提供される。酸素捕捉剤は、二酸化炭素捕捉という2次機能を示すことができる。望ましい結果を得るために、かかる材料を望ましい比率で配合することができる。二酸化炭素捕捉剤は、金属酸化物及び金属水酸化物を含む。金属酸化物は水と反応して金属水酸化物を生成する。金属水酸化物は二酸化炭素と反応して、水と金属炭酸塩を形成する。例えば、酸化カルシウムが用いられる場合には、酸化カルシウムは、吸着剤に加えられる水と反応することになり、水酸化カルシウムを生成する。CaOH2O→CaOH2水酸化カルシウムは二酸化炭素と反応し、炭酸カルシウムと水とを形成する。CaOH2CO2→CaCOH2O捕捉剤は、サッシェ、パッチ、コーティング、ポケット、及びパケットのような何れかの公知の形態で保存容器又は保存バッグ内に組み込むことができる点は理解されるであろう。血液保存デバイス内へのRBCの導入前に酸素除去が完結する場合には、この酸素除去は、当該技術分野で公知の何れかの方法によって達成することができる。例えば、望ましい酸素含有量又は二酸化炭素含有量に達するまで、或いは、酸素及び二酸化炭素の実質的に全てが除去されるまで、RBCの懸濁液は、不活性ガス定められた二酸化炭素濃度を有する、又は有さないを緩やかに混合させながら又は混合させずに繰り返しフラッシングすることができる。不活性ガスは、アルゴン、ヘリウム、窒素、これらの混合物、或いはヘモグロビンのヘム部分に結合しない何れか他のガスとすることができる。本開示のOCDD及び様々な保存バッグは、様々な組み合わせで用いることができる。例えば、図3のOCDD101は、図4の血液バッグ、図5aの201、又は図6aの301と共に用いることができる。酸素が図6bのバッグ内サッシュ215によって減損される場合には、図6bのように保存することができ、或いは、長期保存のために酸素/二酸化炭素減損済み成分を図4、図5a、又は図6aのような最終保存バッグに転送することができる。他の組み合わせ及び構成も完全に本開示の範囲内にある。本開示はまた、血液保存デバイスの別の実施形態を提供する。このデバイスは、赤血球を保持及び保存するように適合されたシール容器である。容器は、積層体から形成された壁を有する。積層体は、a酸素又は酸素及び二酸化炭素に対して実質的に不透過の材料からなる外側層と、b赤血球に適合する材料からなる内側層と、c外側層と内側層との間の介在性層とを有する。介在性層は、ある量の酸素捕捉剤又は酸素/二酸化炭素捕捉剤を混合させた材料からなる。これらの層は、好ましくはポリマーの形態をとる。外側層に好ましいポリマーはナイロンである。内側層に好ましいポリマーはPVCである。介在性層のポリマーは、内側層と外側層との間の効果的な接着、及び介在性層内への酸素捕捉剤又は酸素/二酸化炭素捕捉剤の効果的な混合を可能にしなければならない。介在性層に有用なポリマーは、例えば、エチレン及びプロピレンのホモポリマー及びコーポリマー等のオレフィンポリマー、並びにアクリルポリマーを含む。本開示はまた、血液保存システムの別の実施形態を提供する。本システムは、赤血球用採取バッグと、赤血球から酸素又は酸素及び二酸化炭素を減損させ、白血球及び/又は血小板を低減するための単体デバイスと、赤血球用の保存バッグと、採取バッグを単体デバイスに接続し、単体デバイスを保存バッグに接続する管体と、を有する。この実施形態の特徴は、赤血球から酸素又は酸素及び二酸化炭素を減損させ、白血球及び/又は血小板を低減する機能が別個のデバイスを必要せずに、単一の単体デバイスに組み合わされることである。例えば、単体デバイスは、単一のカートリッジの形態をとることができる。白血球及び/又は血小板の低減は通常、赤血球がメッシュを通過することによって実施される。この実施形態では、メッシュは、本明細書で開示されたフラッシング又は捕捉の酸素減損デバイス又は酸素/二酸化炭素減損デバイス内に組み込むことができる。メッシュは、好ましくは、白血球及び/又は血小板低減がフラッシング又は捕捉の開始前に行われるようにデバイス内に配置される。以下は、本開示の実施例であり、限定として解釈すべきではない。図12aから図12hは、対照O2減損又はCO2減損のない好気性OFAS3、嫌気性OFAS3O2とCO2の両方が純Arで減損された、及び95のArと5のCO2でO2のみが減損されたものCO2は減損されていないを示す、3群試験結果を示している。血液全体をCP2DPall内に採取して2K×Gで3分間遠心分離し、血漿を除去し、添加剤溶液AS-3Nutricel、Pall又は実験用のOFAS3を添加した。このユニットを3つの600mLバッグに均等に分割し、2つのバッグをAr又はAr/CO2で7回ガス交換して150mLのPVCバッグに移し、Ar/H2又はAr/H2/CO2と共に嫌気性シリンダ内で1°Cから6°Cで保存した。1つの対照バッグをガス交換なしで同様に処理し、大気中で1°Cから6°Cで保存した。バッグを9週まで毎週サンプリングした。図12a、図12c、図12e、及び図12gのプロットは、添加剤溶液OFAS3200mL、実験用、専用を用いたものであり、図12b、図12d、図12f、及び図12hのプロットは、AS-3添加剤溶液を用いたものである。添加剤溶液を比較すると、DPGレベルに対するCO2減損の効果は類似している。OFAS3は、酸素±CO2が減損された時に高いATPを示し、O2減損単独では、好気性対照と比較してATPの著しい増加を示した。AS-3添加剤は、O2が単独で減損された時に、ATPの有意な増加を示さなかった。図12a及び図12bは、保存中のDPGレベルである。酸素に加えてCO2を除去した場合、DPGレベルは、2週間を超えて維持された。図12cは、OFAS3を用いた保存中のATPレベルである。OFAS3RBCを用いると、最も高いATPレベルは、O2のみが減損された時に得られた。O2/CO2減損では、対照と比較して中間のATPレベルが観測され、他方、最初の2.5週の間には極めて高いDPGレベルが得られた。極めて高いATPレベルは、高い24時間輸血後回収率を示唆することができる。従って、二酸化炭素及び酸素減損レベルの範囲を調整し、受血者の特定要件を満たすことができる。DPGレベルは、受血者の緊急の酸素要求を満たす目的で極めて高く維持することができるATPを犠牲にして。対照的に、極めて高いATPレベルは、高い24時間回収率輸血時の生存不能なRBCの低い比率を可能にし、これにより輸血に必要な血液量を削減することができるRBCのうちの最大25が生存不能。より重要なことには、このことによって、輸血直後の最大酸素輸送効率を必要する可能性が低いDPGレベルは体内で8~48時間後に回復する、慢性的に輸血を受け続けている患者で、生存不能なRBCによって引き起こされる有毒な鉄過剰投与に苦しむ患者が恩恵を受けることになる。図12dは、AS3を用いた保存中のATPレベルである。AS3RBCを用いると、最も高いATPレベルはO2だけが減損された時に得られた。対照及びO2減損のみの場合には、ATPレベルにおいて有意な差は認められなかった。図12e及び図12fは、RBC細胞基質内部及び懸濁媒質外部のpHである。ガス交換の直後0日目には、CO2がO2と共に減損された場合にのみpH内外のの著しい上昇が観測された。CO2/O2減損サンプルに関して観測された急激なpH低下率は、高いラクテート生成率によって引き起こされたものである図12g及び図12h。図12g及び図12hは、OFAS3及びAS3を用いた保存中の正規化されたヘモグロビンに対してグルコース及びラクテートのレベルである。高いグルコース減損率及びラクテート生成率は、パネルA及びパネルBにおいて観測された高いDPGレベルに相応する。記号/線に対する凡例は両方のパネルにおいて同じである。OFAS3添加剤は、2倍の体積で同様のグルコース濃度を含み、高い正規化グルコースレベルを生じる。図12a及び図12cは合わせて、O2が減損される時のCO2減損のレベルを制御することによって、ATPレベル及びDPGレベルの増加範囲対照と比較してを調節することができることを示唆している。増加したDPG生成によって高いグルコースの利用及びラクテートの生成が観測された図12g。AS3添加剤を用いた場合にも、グルコースの利用及びラクテートの生成において同様の傾向が観測されたことから図12h、上記のことを有効とすることができる。図13は、好気性RBC及び嫌気性RBCに対するガンマ線照射の効果を比較したグラフを示している。図13は、好気性でガンマ線照射されていない対照ユニットRBCユニットA、黒塗り実線、ガンマ線照射された好気性RBCユニットB、塗りつぶし円と点線とで示した、対照にガンマ線照射を加えたもの、及びガンマ線照射された嫌気性減損RBCユニットユニットC、嫌気性γ、白円と実線を示している。ユニットB及びユニットCは照射され、ユニットAは非照射の好気性RBCである。測定される血液組成はカリウムである。保存媒質中で測定されるRBCからのカリウムKの漏出量は、RBCの健全性の指標である。従って、本出願において、RBC保存媒質中の高いカリウム濃度レベルは、RBC保存媒質中の低いカリウム濃度レベルと比較して大きなRBC損傷レベルを示す。図13は、ガンマ線照射がユニットB及びユニットCにおいて1週目の間に高いK漏出率を誘発したことを示している。8日目以降15日目までのK漏出率は、全てのユニットにおいて同様であった。重要な点として、ユニットBとユニットCとの間のK漏出の間の差は、保存22日目を超えると増加している。これらの結果は、あと数日間この傾向が存在する可能性があることを示している。従って、嫌気性減損及びガンマ線照射の使用により、成分分離後に調製される嫌気性減損及びガンマ線照射された血液において28日間の現在のFDA保存限度の延長を可能にすることができる。免疫不全の個体にはRBC照射が必要となる。本発明の結果では、照射されて酸素減損もされたRBCが、RBC損傷の指標であるK漏出率を高めなかったことを示している。高いレベルのATP及びDPG-2,3を含む酸素減損されたRBCの利点は、照射による悪影響を受けない。上記のグラフでは、4つのABORhが同一のユニット米国赤十字から入手した標準RBC濃縮液に、AS3を添加し、白血球除去したものにおけるをプールした。このプールしたユニットを採血の24時間以内に4つの分量に細分化し、1~6°Cで保存した後、これから上記にグラフ化した実験において3つのユニットを用いた。本開示はある特定の実施形態を詳細に説明しているが、当業者には公知の変更及び修正が本開示の範囲内にある点は理解される。従って、本開示は、本開示に記載した範囲内にある全てのかかる代替形態、修正形態、及び変形形態を含むことを意図している。"