"阿波番茶からの抽出物と、桑茶からの抽出物とを含むことを特徴とする抗アレルギー組成物。前記阿波番茶からの抽出物、及び、前記桑茶からの抽出物は、いずれも熱水により抽出されたものであることを特徴とする請求項1に記載の抗アレルギー組成物。前記阿波番茶からの抽出物と、前記桑茶からの抽出物との比率は、阿波番茶1:桑茶1~阿波番茶1:桑茶4であることを特徴とする請求項1又は2に記載の抗アレルギー組成物。阿波番茶からの抽出物と、桑茶からの抽出物とを含むことを特徴とする抗アレルギー物質セット。前記阿波番茶からの抽出物、及び、前記桑茶からの抽出物は、いずれも熱水により抽出されたものであることを特徴とする請求項4に記載の抗アレルギー物質セット。阿波番茶から熱水により抽出物を得る工程と、桑茶から熱水により抽出物を得る工程とを含むことを特徴とする抗アレルギー組成物の製造方法。阿波番茶から熱水により抽出物を得る工程と、桑茶から熱水により抽出物を得る工程とを含むことを特徴とする抗アレルギー物質セットの製造方法。徳島県には、阿波番茶というお茶がある。阿波番茶は、いわゆる後発酵茶であり、まず、茶葉を釜でゆでる。その後、お茶の葉を木桶に詰めて上に石を載せて漬け物状態とする。こうすると、茶葉についていた自然の乳酸菌の働きで、普通の漬け物と同じく乳酸発酵する。10日から半月程度漬けた後、天日で乾燥させて、阿波番茶が完成する。もっとも、阿波番茶の、単なる飲用以外の用途については、まだまだ探求の余地が残されている。本発明は、上記の点に鑑みてなされたものであって、特に、阿波番茶を有効活用できる新たな抗アレルギー組成物、抗アレルギー物質セット、及び抗アレルギー物質セットの製造方法を提供することを目的としている。上記の問題点を解決するために、本発明に係る抗アレルギー組成物は、阿波番茶からの抽出物と、桑茶からの抽出物とを含むことを特徴としている。本願発明者は、鋭意検討した結果、阿波番茶からの抽出物と、桑茶からの抽出物とを混合投与することにより、阿波番茶単独の場合や、桑茶単独の場合と比較して有意な抗アレルギー活性を示すことを見出した。ここで、阿波番茶からの抽出物、桑茶からの抽出物としては、ともに熱水を用いて抽出した抽出物を用いることができる。このような相乗効果を奏する有効成分、作用機序については、本願発明者らは鋭意検討中であるが、エタノール等のアルコールで抽出した抽出物を用いることも考えられるところである。なお、このような相乗効果が実現される理由についても、鋭意検討を進めているところであるが、両者は、必ずしも混合投与する必要はなく、所定の時間間隔をあけて投与するような形態も可能である。即ち、本発明に係る抗アレルギー物質セットは、阿波番茶からの抽出物と、桑茶からの抽出物とを含むことを特徴としている。例えば、両者の粉末を分けて分封としたり、両者の溶液を分けてアンプルとしたり、といった形態が考えられる。また、本発明に係る抗アレルギー物質セットの製造方法は、阿波番茶から熱水により抽出物を得る工程と、桑茶から熱水により抽出物を得る工程とを含むことを特徴としている。本発明に係る抗アレルギー組成物等によると、阿波番茶を有効活用でき、新たな抗アレルギー組成物が提供されるという効果を奏する。以下、本発明の実施の形態について説明する。1阿波番茶抽出物の調製阿波番茶の茶葉茶葉としては、上勝番茶、若しくは那賀町番茶を用いた。10gを90°Cの熱水1000mlで5分間抽出し、熱時ろ過後冷却した。その抽出液を真空凍結乾燥し、抽出物を得た。2桑茶抽出物の調製桑茶の茶葉茶葉としては、山桑茶と川桑茶との混合物を用いた。10gを90°Cの熱水1000mlで5分間抽出し、熱時ろ過後冷却した。その抽出液を真空凍結乾燥し、抽出物を得た。3アレルギーモデルラットの作成6週齢のBrown-Norway系雄性ラットの両側鼻前庭に極細耳鼻用綿棒を用い、10μlの10toluene2,4-diisocyanateTDI-酢酸エチル溶液を1日1回連日5日間×2回塗布しTDI感作、その後1週間無処置期間をおいた上で10TDI溶液の鼻前庭塗布にて誘発したTDI誘発。各抽出物は1日1回TDI感作の1時間前にラット1匹につき以下の各サンプルに示す量を水に溶解して2mlにし、3週間連日投与した。4テストに用いたサンプルの種類A桑茶抽出物0.5mg/day/ratB桑茶抽出物2.0mg/day/ratC阿波番茶抽出物0.5mg/day/ratD桑茶0.5mg/day/rat、阿波番茶0.5mg/day/ratを混合投与mix1E桑茶2.0mg/day/rat、阿波番茶0.5mg/day/ratを混合投与mix2なお、何も加えていないものコントロールは、サンプルFとする。5鼻粘膜採取TDI誘発の4時間後に断頭し、鼻粘膜を採取して100μlのRNAlater中に入れて-80°Cで保存し、その後、totalRNAを抽出して逆転写反応を行った。なお、totalRNAの抽出は、以下のようにして行った。即ち、PBS-で数回洗浄した後、0.7mlRNAisoを加え、かきとった。RNAisoの0.3倍量のクロロホルムを加え、15秒間強く振盪し二層に分離させた後、15,000rpm、4°Cで15分、遠心した。RNAを含む上層を採取し、上層と同量のイソプロパノールを加え15秒間強く振盪し室温で5分間放置したものを15,000rpm、4°Cで10分遠心するとRNAのペレットが得られた。これを75エタノール-20°C、500μLで洗浄するためvortexして10分室温で放置した。15,000rpm、4°Cで10分、遠心した後、得られたペレットに20μldiethylpyrocarbonate水を加えRNAsolutionとした。これをNanoDropND-1000により波長260nm、280nmで吸光度測定し、260nmの吸光度と2つの波長の比による検定で、それぞれtotalRNA濃度と純度を測定した。逆転写は、以下のようにして行った。即ち、サンプルチューブにtotalRNA2μg相当のRNAsolutionになるようDEPC水を加えて全量を10μlとした。HighCapacitycDNAReverseTranscriptionKitsを用いてサーマルサイクラーで逆転写反応を行い、cDNAに変換した。逆転写後、2種類のプライマーとTaqManプローブを用いてリアルタイムPCR反応を行った。より具体的な方法は、以下の通りである。即ち、2種類のプライマーとTaqManプローブを用いてSequenceDetectorGeneAmp7300SequenceDetectionSystem、AppliedBiosystemsにてPCR反応を行った。PCR産物の増幅曲線をリアルタイムで検出し、SequenceDetectionソフトウェアを用いて解析、定量化した。また定量的RT-PCRの主な変動の要因であるRNAの純度や逆転写効率の差を補正する内部標準として、細胞の活性化あるいは増殖といった環境条件に伴う発現の変動が理論上なく、常に一定レベルで発現していると考えられているハウスキーピング遺伝子のGAPDHGlycelaldehyde3phosphatedehydrogenase遺伝子に特異的なTaqManプローブとプライマーTaqManrodentGAPDHControlReagentsを用いた。図1、図2、図3、図4は、それぞれ、ヒスタミンH1受容体H1R遺伝子発現の様子を示す図である。図1はグラフであり、図2は、図1の具体的な数値を示す図、図3はグラフであり、図4は、図3の具体的な数値を示す図である。ヒスタミンH1受容体H1Rは、アレルギー疾患の主要メディエーターであり、標的細胞のヒスタミンH1受容体を介して主要な症状が発現される。図1中、TDIはコントロールサンプルF、図1における桑はサンプルA、阿波番茶はサンプルC、mix1は、サンプルD、を、それぞれ投与した結果を示す。また、図2中、TDIはコントロールサンプルF、図2における桑はサンプルB、阿波番茶はサンプルC、mix1は、サンプルE、を、それぞれ投与した結果を示す。両図に示されるように、桑茶抽出物と、阿波番茶抽出物とを混合投与サンプルD及びサンプルEすることにより、ヒスタミンH1受容体の遺伝子発現を有意に抑制した。なお、上記実施の形態に例示される阿波番茶からの抽出物と、桑茶の抽出物とは、必ずしも、投与前に混合されている必要はなく、両者を分けて販売等してもよく、例えば、両者の粉末を分けて分封としたり、両者の溶液を分けてアンプルとしたり、といった形態も考えられる。"