"下記a及びbの工程を有する、過酸化脂質の測定方法:a水性溶媒中で、下式Iで示される化合物と過酸化脂質とを反応させる工程、及び式中、nは4であるb上記aの反応で生じる蛍光性化合物を、蛍光検出する工程。下記A及びBの工程を有する、被験試料中の過酸化脂質を測定する方法:A下式Iで示される化合物を水性溶媒に溶解させた状態で被験試料と接触させて、化合物Iと被験試料中の過酸化脂質とを反応させる工程、及び式中、nは4であるB上記Aの反応で生じる蛍光性化合物を、蛍光検出する工程。蛍光検出に用いる励起波長が480nm~600nmであり、蛍光波長が500nm~650nmである、請求項1または2に記載する測定方法。被験試料中の脂質の過酸化度を測定する方法である、請求項2または3に記載する測定方法。本発明は、上記SpyLHPの短所を改良し、生体試料、特に細胞内に存在する過酸化脂質を、蛍光顕微鏡やフローサイトメーター等を用いて、より高感度に測定するための方法を提供することを目的とする。より具体的には、本発明は、過酸化脂質に対して特異性が高く、生体試料由来の自家蛍光の影響を受けにくくて細胞へのダメージが小さい上記SpyLHPの利点を活かしながらも、その短所である極性の低さを改良し、DMSOやエタノール等の極性溶媒に対して高い溶解性を有する蛍光試薬を使用して、培養細胞等の生体試料中の過酸化脂質をより高感度に測定するための方法を提供することを目的とする。本発明者らは、上記課題を解決すべく、鋭意検討していたところ、下記の式Iで示される化合物:式中、nは4であるが、従来の蛍光試薬SpyLHPとは異なり、DMSOやエタノール等の極性溶媒に対して高い溶解性を有していることを見出し、細胞内の過酸化脂質をより高感度に測定することができることを確認した。本発明はかかる知見に基づいて完成したものであって、下記の実施形態を有する:項1:下記a及びbの工程を有する、過酸化脂質の測定方法:a水性溶媒中で、下式Iで示される化合物と過酸化脂質とを反応させる工程、式中、nは4である及び、b上記aの反応で生じる蛍光性化合物を、蛍光検出する工程。項2:下記A及びBの工程を有する、被験試料中の過酸化脂質を測定する方法:A下式Iで示される化合物を水性溶媒に溶解させた状態で被験試料と接触させて、化合物Iと被験試料中の過酸化脂質とを反応させる工程、及び式中、nは4であるB上記Aの反応で生じる蛍光性化合物を、蛍光検出する工程。項3:蛍光検出に用いる励起波長が480nm~600nm、好ましくは524nm付近であり、蛍光波長が500nm~650nm、好ましくは535nm付近である、項1または2に記載する測定方法。項4:被験試料中の脂質の過酸化度を測定する方法である、項2または3に記載する測定方法。本発明の方法で使用する式Iで示される化合物以下、化合物Iともいうは、非特許文献7や特許文献1に記載されているSpyLHP後述する比較化合物IIと同様に、過酸化脂質を特異的に蛍光検出することができ、また細胞内成分由来の自家蛍光が測定系に与える影響を抑制しながら、かつ生きた細胞を用いる測定系においては励起光の照射が当該細胞に与えるダメージを抑制しながら、過酸化脂質を蛍光検出することができるという利点を備える。また、化合物Iは、SpyLHPの難点であった、DMSOやエタノール等の極性溶媒に対する溶解性の低さが改良されて、これらの極性溶媒に対して高い溶解性を有するため、培養細胞等の生体試料中の過酸化脂質の測定に好適に使用することができる。しかも、本発明の化合物Iによれば、培養細胞、特に細胞の脂質膜等の生体試料中の過酸化脂質を、上記SpyLHP比較化合物IIに比して高感度に測定することができる。つまり、本発明の化合物Iを蛍光プローブとして用いることを特徴とする本発明の方法によれば、培養細胞等の生体試料中の過酸化脂質を、高い特異性と高い感度をもって、測定することができる。1蛍光プローブ、過酸化脂質測定試薬本発明が提供する過酸化脂質測定方法は、蛍光プローブとして下式Iで示される化合物を使用することを特徴とする。ここでnは4を意味する。当該化合物は、ジイソキノリン環の片方にテトラエチレングリコール基が導入されたものであり、水性溶媒中での溶解性または分散性が、前述するSpyLHP特許文献1よりも向上していることを特徴とする。当該化合物のDMSOジメチルスルホキシドに対する溶解性は、室温条件下で、通常08~12mgml程度である。当該化合物Iは、上記DMSOのみならず、メタノール、エタノール、プロパノール、ブタノール、ヘキサノール及びヘプタノール等の炭素数1~6、好ましくは炭素数1~4、より好ましくは炭素数1~2の低級アルコール等の水性溶媒に対しても、良好または高い溶解性または分散性を有することを特徴とする。当該化合物Iは、それ自身は蛍光性を有しないものの、過酸化脂質、特に脂質過酸化の初期に多量に生成するヒドロペルオキシド類と選択的に反応して酸化され、例えば下記式IIで示される蛍光性を有する蛍光性化合物を生成する。nは上記と同じつまり、本発明の化合物Iは、過酸化脂質の存在を検出し測定するための手掛かりに用いられ、過酸化脂質と特異的に相互作用して、上記蛍光性化合物IIを生成するため、前述するように、蛍光プローブとして有用である。この蛍光性化合物IIは、励起波長480nm~600nm、好ましくは480~530nm;蛍光波長500nm~650nm、好ましくは520nm~650nmの蛍光特性を有している。このように励起波長及び蛍光波長が長波長領域にあると、細胞内成分由来の自家蛍光が測定系に与える影響を抑制することができ、かつ生きた細胞を用いる測定系に対しては、励起光の照射が当該細胞に与えるダメージを抑制しながら蛍光検出を行うことができる。本発明の化合物Iは、このような性質を有するため、過酸化脂質を測定するための蛍光プローブとして、また過酸化脂質を測定するための試薬過酸化脂質測定試薬として好適に使用することができる。当該蛍光プローブ及び過酸化脂質測定試薬は、化合物Iが過酸化脂質と選択的に反応して蛍光性化合物IIを与えることができるので、当該プローブまたは試薬によれば、脂質過酸化を簡便な方法で蛍光検出することができる。特に、本発明の化合物Iは、前述するように、蛍光検出に用いる励起波長及び蛍光波長が長波長領域にあるので、細胞内成分由来の自家蛍光が測定系に与える影響を抑制し、かつ生きた細胞を用いる測定系においては励起光の照射が当該細胞に与えるダメージを抑制しながら、蛍光検出を行うことができる点で有用である。本発明の化合物Iは、過酸化脂質の測定において、蛍光プローブまたは過酸化脂質測定試薬として使用する場合、通常、水と相溶性を有する水性溶媒に溶解した状態で使用される。水性溶媒は、水と相溶性を有する極性溶媒であり、例えばアセトニトリル、NNジメチルホルムアミドDMF、ジメチルスルホキシドDMSO、酢酸、ギ酸、1-ブタノール、2-プロパノール、1-プロパノール、エタノール、及びメタノールを例示することができる。好ましくはジメチルスルホキシドDMSO、及びメタノールやエタノール等の低級アルコールであり、より好ましくはDMSO及びエタノールである。この場合、過酸化脂質測定試薬中に化合物Iは、1nmolL以上含有していることが好ましい。また、過酸化脂質測定試薬は、化合物I及び上記溶媒の他、リポソームやミセルなど、本発明の化合物I及び過酸化脂質に対して不活性なものを、添加剤として含むものであってもよい。なお、本発明の化合物Iは、公知のペリレン化合物又はペリレンを原料として合成される。これらの原料は、論文記載の合成法例えば、HLanghalsHeterocycles40477に従って合成するか、又は市販品を用いることができる。例えば、環状酸無水物などの反応性基を有するペリレン誘導体に、アミノ基などの反応性基を有するリン原子含有基を155°C~160°Cで3時間~5時間還流することによって、本発明のペリレン誘導体を得ることができる。また、ペリレン構造にリン原子含有基を直接導入する場合は、例えば、ハロゲン原子などの反応性基を有するペリレン誘導体に、リン原子含有基として第二級ホスフィン化合物を加え、酢酸パラジウムなどの触媒存在下において、80°C~130°Cで1時間~72時間還流することによって、本発明のペリレン誘導体を得ることができる特許文献1参照。より詳細な製造方法は、後述する製造例において説明する。なお、生成物の精製は、通常有機合成に使用される精製方法により行えばよい。2過酸化脂質の測定方法本発明の過酸化脂質の測定方法は、上記本発明の化合物Iを過酸化脂質計測用試薬として用いて、過酸化脂質と反応して生じる蛍光性化合物IIを指標として、過酸化脂質を蛍光検出することを特徴とする。具体的には、本発明の過酸化脂質の測定方法は、下記の工程により実施することができる。水性溶媒中で、a本化合物Iと過酸化脂質とを反応させる工程、及びb上記aの反応で生じる蛍光性化合物IIを、蛍光検出する工程。ここで水性溶媒とは、水を相溶性のある溶媒を意味し、前述する極性溶媒を例示することができる。好ましくはジメチルスルホキシドDMSO、及びメタノールやエタノール等の低級アルコールであり、より好ましくはDMSO及びエタノールである。前述するように、本化合物Iはこれらの水性溶媒に可溶性であるため、簡便には、本化合物Iを、これらの水性溶媒に溶解して過酸化脂質との反応に供することができる。aの反応工程は、1~40°Cの温度範囲、好ましくは20~40°Cで、水性溶媒の存在下、本化合物Iと過酸化脂質とを共存状態におくことで実施することができる。その時間は、特に制限されないが、通常1分以上、好ましくは2~10分間程度、より好ましくは3~5分間程度を例示することができる。なお、aの反応工程は、過酸化脂質を含み得る被験試料を対象として行うこともできる。過酸化脂質を含み得る被験試料としては、ヒトなどの動物の生体由来の試料生体試料、具体的には、血液血清、血漿、尿、涙、唾液、汗、細胞、及び組織組織の破砕物や抽出物を含むを例示することができる。また、植物に由来する試料、具体的には植物体の抽出物、細胞または組織組織の破砕物や抽出物を含むを例示することもできる。つまり、この場合、本発明の方法は、被験試料中の過酸化脂質の存在やその量を定性的また定量的に測定する方法として使用することができる。この場合、上記aの工程は、本化合物Iを水性溶媒に溶解させた状態で使用し、これを被験試料と接触させて、本化合物Iと被験試料中の過酸化脂質とを反応させることによって実施することができる工程。反応に際して、水性溶媒に溶解させる本化合物Iの濃度としては、通常01mgmL以上、好ましくは01~15mgml程度、より好ましくは05~12mgmL程度、特に好ましくは08~10mgmL程度を例示することができる。この場合の反応条件は、被験試料にダメージが生じない温度条件であればよく、上記の通り、1~40°Cの温度範囲、好ましくは20~40°Cを例示することができる。また、反応時間は、特に制限されないが、通常1分以上、好ましくは1~40分程度を例示することができる。このため、本発明の方法は、生きた細胞にも細胞抽出成分にも適用することができる。例えば、本発明を、生きた細胞における過酸化脂質の蛍光イメージングに適用する際には、まず、過酸化脂質測定試薬を細胞と接触させることで本化合物Iを細胞内に導入し、蛍光顕微鏡画像解析システムなどを用いることで検出を行う。また、生きた細胞に過酸化脂質測定試薬を接触させることで本化合物Iを細胞内に導入し、フローサイトメーターやプレートリーダーなどで蛍光検出を行うこともできる。また、例えば、細胞抽出試料中の過酸化脂質量を測定する場合は、細胞抽出試料と過酸化脂質測定試薬を混合した後、蛍光分光光度計、プレートリーダー、高速液体クロマトグラフィーHPLC、フローインジェクションなどの手法で蛍光検出を行うことができる。bの工程は、上記の工程で生じる蛍光性化合物IIを蛍光検出する工程である。また、工程に引き続いて行われるB工程は、bの工程と同様に、Aの工程で生じる蛍光性化合物IIを蛍光検出する工程である。本発明の測定方法において、蛍光検出に用いる励起波長は480nm~600nmの範囲内、特に480~530nmであり、また、蛍光検出に用いる蛍光波長は500nm~650nmの範囲内、特に520~650nmである。このように、本方法の好ましい態様によれば、蛍光検出に用いる励起波長及び蛍光波長が長波長領域で行えることから、細胞内成分由来の自家蛍光が測定系に与える影響を抑制しながら、かつ生きた細胞を用いる測定系においては励起光の照射が当該細胞に与えるダメージを抑制しながら蛍光検出を行うことができるという利点がある。また、本発明の測定方法によれば、実施例4と5に示すように、水性溶媒に溶解した本発明化合物Iを細胞に添加して細胞内に本発明化合物Iを充分量取り込ませ、脂質酸化開始剤により細胞内で生成した過酸化脂質と本発明化合物Iが反応して生成する蛍光性化合物IIを高い感度で蛍光検出することができる。以下、本発明の構成と効果を、製造例及び実施例を用いて説明する。但し、本発明は、これらの実施例などに何等制限されるものではない。製造例下記の方法に従って、下式Iで示される化合物本発明の化合物を特許文献1特開2006342135号公報の実施例1に類似の方法で合成した。1化合物3の製造4ヨードアニリン化合物2438gを原料とし、DMA、酢酸カリウム、酢酸パラジウム及びジフェニルホスフィン化合物1を加え、加熱還流したのち、得られた粗製物をシリカゲルカラムにより精製を行った。MSと1HNMRにより生成物の確認を行った。[結果]生成物の分析結果は以下のとおりであり、化合物3の生成を確認した。収率32305g583性状淡黄色油状1HNMRδ364066677172725735MSmz277。2本発明の化合物Iの製造34910ペリレンテトラカルボン酸二無水物化合物4141gを原料とし、36912オキサトリデシルアミン化合物5を反応させたのち、上記で製造した化合物3を精製することなく添加し、酢酸亜鉛及びイミダゾールを適宜加えて反応させた。得られた粗製物は、シリカゲルカラムにより精製を行った。MSと1HNMRで生成物の確認を行った。[結果]生成物の分析結果は以下のとおりであり、本発明の化合物Iの生成が確認された。収率90mg30性状暗赤色粉末1HNMRδ323973758588MSmz841。実施例1各種溶媒への溶解性評価上記製造例で製造した本発明の化合物の各種溶媒への溶解性を、下式IIで示されるSpyLHP同仁化学研究所と比較した。結果を下表に示す。ここに示すように、SpyLHPはクロロホルムなどの非極性溶媒には比較的容易に溶解するが、エタノールやDMSOなどの水性溶媒への溶解性は極めて乏しい。それに比較し、本化合物Iは、エタノールやDMSOなどの水性溶媒への溶解性が比較的よく、そのためDMSO溶媒に溶解させたのちに水へ添加することで、不溶化することなく実験に供することが可能である。実施例2基礎的な蛍光特性の評価製造例1で製造した本発明の化合物Iと、本発明化合物が過酸化物との反応により形成する酸化体である蛍光化合物の基礎的な蛍光特性を評価した。具体的には、エタノール中、本発明化合物に過酸化脂質であるリノール酸メチル過酸化物を添加して蛍光測定を行い、添加前の蛍光スペクトルすなわち、化合物Iの蛍光スペクトルと、添加後の蛍光スペクトルすなわち、蛍光性化合物の蛍光スペクトルを対比した。結果を図1に示す。図1に示すように、本化合物I及び蛍光性化合物の最大励起波長λex:524nm及び最大蛍光波長λem:535nmは共に500nm以上という長波長領域に存在すること、また本化合物Iが過酸化物と反応すると、蛍光性化合物が生成して蛍光強度が大きく増大することから、本化合物Iは、SpyLHP特許文献1と同様に、蛍光プローブとして非常に優れた特性を有することが確認された。実施例3過酸化物の測定本発明化合物の過酸化脂質検出能を評価するため、エタノールに溶解した本発明化合物に、脂溶性過酸化物であるリノール酸メチル過酸化物を添加し、蛍光測定を行った。測定の条件は次のとおりである。<測定条件>本発明化合物Iの濃度:1μMリノール酸メチル過酸化物の濃度:0~200nM温度:室温25±5°C測定に使用した励起波長λex:524nm測定に使用した蛍光波長λem:535nmバンド幅励起蛍光:25nm25nm。なお、蛍光測定はリノール酸メチル過酸化物を、本発明化合物Iをエタノールに溶解したプローブ溶液化合物濃度:1μMに添加し、室温で10分間放置した後に行った。各種濃度0~200nMのリノール酸メチル過酸化物を添加し、反応させた後に測定した蛍光スペクトルを図2Aに示す。また、リノール酸メチル過酸化物添加前後の蛍光強度比FF0とリノール酸メチル過酸化物の濃度0~200nMとの関係を示したグラフを図2Bに示す。図2BのF及びF0はそれぞれリノール酸メチル過酸化物添加後及び添加前の蛍光強度を示している。図2Aに示すように、本発明化合物に対するリノール酸メチル過酸化物の添加量が増加するに伴って、蛍光強度が増大した。また、図2Bに示すように、本発明化合物の蛍光強度比FF0とリノール酸メチル過酸化物の濃度との間には相関関係があり、リノール酸メチル過酸化物の濃度が0~200nMの領域においては、蛍光強度比FF0とリノール酸メチル過酸化物濃度との間に直線関係が成り立つことが明らかとなった。これらのことから、本発明化合物によれば、過酸化脂質の検出を定量的に行うことができる。実施例4蛍光顕微鏡観察上記製造例で製造した本発明化合物以下、本化合物Iともいう、及び比較化合物として上記式IIで示されるSpyLHP同仁化学研究所以下、比較化合物ともいうを用いて、細胞中の過酸化脂質を蛍光顕微鏡にて測定した。測定には、各化合物を、それぞれ極性溶媒DMSOまたは非極性溶媒クロロホルムに溶解して調製した試薬を使用した。1試薬の調製11DMSO溶解試薬本化合物Iを、1mM濃度になるように、室温でDMSOに溶解してDMSO溶解試薬とした。一方、比較化合物IIは、上記本化合物Iと同じ量を同量のDMSOに溶解して室温、溶解しきれなかった残渣を遠心分離することで除去した。比較化合物IIの濃度は04~06mM程度であった。12CHCl3溶解試薬本化合物Iおよび比較化合物IIを、いずれも10mM濃度になるように、室温でクロロホルムに溶解してCHCl3溶解試薬とした。2実験方法脂質酸化開始剤として、22アゾビス22イミダゾリン2イルプロパンジヒドロクロライドAIPHおよびクメンヒドロペルオキシドCumeneOOHを使用して、ヒト神経芽細胞腫SHSY5Y細胞を処理して、細胞中の過酸化脂質のレベルを蛍光顕微鏡励起波長:505nm、蛍光波長:510550nmで観察評価した。具体的には、培養したヒト神経芽細胞腫SHSY5Y細胞30×105cellsmL、ウシ胎児血清10ペニシリンストレプトマイシン1を含むDMEMF12培地を、6wellplatewellの直径346mm、IWAKI製に2mLwellとなるように、播種し、一晩培養した。これを、上記で調製した本化合物Iおよび比較化合物IIの各CHCl3溶解試薬またはDMSO溶解試薬を用いて本化合物Iおよび比較化合物IIの濃度がそれぞれ20μMとなるように調製した無血清培地で、培地交換し、37°C条件で15分間放置して反応させた。次いで、各wellの培地を、脂質酸化開始剤として6mMAIPHまたは100μMCumeneOOHを配合した血清培地でそれぞれ交換し、37°C条件で15分間放置して反応させた。反応後、4濃度になるようにパラホルムアルデヒドを添加して室温で20分間放置し、細胞をパラホルムアルデヒドで固定した後、PBSによる洗浄を2回行い、PBS1mLを添加して蛍光顕微鏡励起波長:505nm、蛍光波長:510550nmで観察した。3実験結果本化合物Iおよび比較化合物IIの各CHCl3溶解試薬を使用して、細胞の過酸化脂質を測定した結果を図3A:本化合物I、B:比較化合物IIに示す。また、本化合物Iおよび比較化合物IIの各DMSO溶解試薬を使用して、細胞の過酸化脂質を測定した結果を図4A:本化合物I、B:比較化合物IIに示す。各図の上段は細胞を明視野で観察した結果を、また下段は、細胞を蛍光顕微鏡励起波長:505nm、蛍光波長:510550nm観察した結果を示す。この結果からわかるように、脂質酸化開始剤として細胞をAIPHで処理した場合も、またCumeneOOHで処理した場合も、いずれの場合も、本化合物IをDMSOに溶解したDMSO溶解試薬を使用することにより、細胞中の過酸化脂質が高い感度で蛍光検出できることが確認された。一方、比較化合物IIは、DMSO溶解試薬を使用した場合も、細胞をAIPHで処理した場合も、またCumeneOOHで処理した場合も、細胞中の過酸化脂質の蛍光検出感度は低く、所望の結果を得ることができなかった。実施例5フローサイトメーターFCMによる測定本化合物Iおよび比較化合物IIについて、実施例4と同様に調製したDMSO溶解試薬及びCHCl3溶解試薬をそれぞれ使用して、細胞中の過酸化脂質をフローサイトメーターを使用して測定した。1実験方法過酸化物として、実施例4と同様に、22アゾビス22イミダゾリン2イルプロパンジヒドロクロライドAIPHおよびクメンヒドロペルオキシドCumeneOOHを使用して、ヒト神経芽細胞腫SHSY5Y細胞を処理して、細胞中の過酸化脂質のレベルを蛍光検出器を備えた下記条件のフローサイトメーターで測定した。具体的には、培養したヒト神経芽細胞腫SHSY5Y細胞30×105cellsmL、ウシ胎児血清10ペニシリンストレプトマイシン1を含むDMEMF12培地を、6wellplatewellの直径346mm、IWAKI製に2mLwellとなるように、播種し、一晩培養した。これを、上記で調製した本化合物Iおよび比較化合物IIの各CHCl3溶解試薬またはDMSO溶解試薬を用いて本化合物Iおよび比較化合物IIの濃度がそれぞれ20μMとなるように調製した無血清培地で、培地交換し、37°C条件で15分間放置して反応させた。次いで、各wellの培地を、脂質酸化開始剤として、6mMAIPHまたは100μMCumeneOOHとなるように調製した血清培地で、それぞれ交換して、37°C条件で15分間放置して反応させた。反応後、PBSによる洗浄を1回行い、PBS500μLを添加してピペッティングで細胞を回収して、上記条件のフローサイトメーターに供して、回収した細胞を解析した。2実験結果本化合物Iおよび比較化合物IIの各CHCl3溶解試薬及びDMSO溶解試薬を使用して処理した細胞について、フローサイトメーターで解析した結果を図5に示す。図中の無染色は本化合物Iおよび比較化合物IIを添加していない細胞を、Controlは本化合物Iおよび比較化合物IIのみで処理し、脂質酸化開始剤で処理していない細胞を表しており,AIPHおよびCumeneOOHはそれぞれ処理した脂質酸化開始剤を示している。この結果からわかるように、本化合物Iおよび比較化合物IIの各CHCl3溶解試薬、または比較化合物IIのDMSO溶解試薬を使用して処理した細胞では、脂質酸化開始剤によってわずかな蛍光強度の増加が認められたが、本化合物IをDMSOに溶解したDMSO溶解試薬を使用した場合では、その蛍光強度が著しく増加した。この結果は、本化合物Iは水溶性度が高くDMSOに充分溶解しているため、水溶性の培養液に添加した場合にも速やかに細胞内に入ったこと示している。一方比較化合物IIはDMSOへの溶解度が低いことに加え、培養液に添加したときに析出して細胞には充分入っていないと考えられる。両化合物のCHCl3溶液を添加した場合は、両者とも細胞のダメージが強く検出操作に耐えられない状態であったと考えられる。両化合物のCHCl3溶液をDMSOと同じ条件で添加した場合は、両者とも細胞のダメージが強く検出操作に耐えられないため、本化合物Iおよび比較化合物IIの各CHCl3溶解試薬は化合物の濃度が10倍になるように調整し、培養液へのCHCl3溶液添加量を10分の1にしておこなった。細胞のダメージは軽減されるが、両化合物とも望ましい蛍光はえられなかった。これはCHCl3溶液と培養液の混合が不良であるためと考えられる。また、上記の結果から、各細胞について蛍光強度の平均値を求めたCHCl3溶解試薬の結果:n3、DMSO溶解試薬の結果:n3。結果を図6に示す。この結果からわかるように、過酸化物としてAIPHを使用した場合も、またCumeneOOHを使用した場合も、本化合物IをDMSOに溶解したDMSO溶解試薬を使用することで、蛍光強度が著しく増強することが認められ、細胞中の過酸化脂質を高感度に検出することができることが判明した。実施例6本化合物Iを用いた細胞中の過酸化脂質検出法本化合物を用いた細胞中の過酸化脂質検出法としては、下記の方法を奨励することができる。1.本化合物50μgを含むチューブにDMSO60μlを添加し、ピペッティングまたはボルテックスを使用して溶解する濃度:1mmoll083mgml。2.上記で調製したプローブ溶液を、測定対象の細胞に添加する。例えば、細胞懸濁液細胞数:10×105cellsml1mlに対して適当量のプローブ溶液を添加する方法を挙げることができるが、このとき細胞懸濁液中のDMSO濃度が1以下になるように、調整することが好ましい。3.37°Cで30分間インキュベートする。4.蛍光顕微鏡、あるいはフローサイトメーター等で観察、分析する。なお、観察及び分析に使用する測定条件は、実施例3に記載する条件に従うことができる。"