"電極層に接着した細胞を培養する方法であって、一方の末端を構成しチオレートを介して前記電極層に結合する末端アミノ酸と、他方の末端を構成し細胞接着性のアミノ酸配列からなる細胞接着性配列と、前記細胞接着性配列の前記一方の末端側に結合し複数の酸性アミノ酸と複数の塩基性アミノ酸とが1つずつ交互に結合してなる交互配列と、を有するオリゴペプチドで被覆された前記電極層に前記細胞を接着させて培養する第一工程と、前記細胞が接着している前記電極層に、前記オリゴペプチドが還元脱離する電位を印加して、前記細胞を前記電極層から脱離させる第二工程と、を含むことを特徴とする培養方法。前記電極層は、培養液中に浮いた状態で保持される多孔質膜の表面に形成されていることを特徴とする請求項1に記載の培養方法。前記第一工程において、前記電極層に前記細胞を接着させて培養することで前記電極層に接着した細胞組織体シートを形成し、前記第二工程において、前記細胞組織体シートが接着している前記電極層に、前記オリゴペプチドが還元脱離する前記電位を印加して、前記細胞組織体シートを前記電極層から脱離させることを特徴とする請求項1又は2に記載の培養方法。前記電極層から脱離させた複数の前記細胞組織体シートを積層して、前記細胞組織体シートの積層体を形成する第三工程をさらに含むことを特徴とする請求項3に記載の培養方法。細胞を接着させて培養するための電極層を有する培養装置であって、前記電極層は、一方の末端を構成しチオレートを介して前記電極層に結合する末端アミノ酸と、他方の末端を構成し細胞接着性のアミノ酸配列からなる細胞接着性配列と、前記細胞接着性配列の前記一方の末端側に結合し複数の酸性アミノ酸と複数の塩基性アミノ酸とが1つずつ交互に結合してなる交互配列と、を有するオリゴペプチドで被覆されていることを特徴とする培養装置。前記電極層は、培養液中に浮いた状態で保持される多孔質膜の表面に形成されていることを特徴とする請求項5に記載の培養装置。しかしながら、特許文献1において使用されたスペーサ物質例えば、アルカンチオールに細胞接着性ペプチドを結合させてなる細胞接着性スペーサ物質が結合した細胞又は細胞組織体は、生体に移植する場合の安全性が明らかでなかった。また、非特許文献1において使用されたオリゴペプチドは、金表面で自己組織化するものではなかったため、当該金表面において当該オリゴペプチドは密な層を形成していなかった。このため、培養培地中のタンパク質等の物質が金表面に非特異的に吸着し、5分間の電位の印加によっても、当該金表面に接着した細胞の10前後は脱離せずに残存することがあった。本発明は、上記課題に鑑みて為されたものであり、医療への応用に適した細胞及び/又は細胞組織体を効率よく製造する培養方法及び培養装置を提供することをその目的の一つとする。上記課題を解決するための本発明の一実施形態に係る培養方法は、電極層に接着した細胞を培養する方法であって、一方の末端を構成しチオレートを介して前記電極層に結合する末端アミノ酸と、他方の末端を構成し細胞接着性のアミノ酸配列からなる細胞接着性配列と、前記細胞接着性配列の前記一方の末端側に結合し複数の酸性アミノ酸と複数の塩基性アミノ酸とが1つずつ交互に結合してなる交互配列と、を有するオリゴペプチドで被覆された前記電極層に前記細胞を接着させて培養する第一工程と、前記細胞が接着している前記電極層に、前記オリゴペプチドが還元脱離する電位を印加して、前記細胞を前記電極層から脱離させる第二工程と、を含むことを特徴とする。本発明によれば、医療への応用に適した細胞及び/又は細胞組織体を効率よく製造する培養方法を提供することができる。また、前記培養方法において、前記電極層は、培養液中に浮いた状態で保持される多孔質膜の表面に形成されていることとしてもよい。また、前記第一工程において、前記電極層に前記細胞を接着させて培養することで前記電極層に接着した細胞組織体シートを形成し、前記第二工程において、前記細胞組織体シートが接着している前記電極層に、前記オリゴペプチドが還元脱離する前記電位を印加して、前記細胞組織体シートを前記電極層から脱離させることとしてもよい。この場合、前記培養方法は、前記電極層から脱離させた複数の前記細胞組織体シートを積層して、前記細胞組織体シートの積層体を形成する第三工程をさらに含むこととしてもよい。上記課題を解決するための本発明の一実施形態に係る培養装置は、細胞を接着させて培養するための電極層を有する培養装置であって、前記電極層は、一方の末端を構成しチオレートを介して前記電極層に結合する末端アミノ酸と、他方の末端を構成し細胞接着性のアミノ酸配列からなる細胞接着性配列と、前記細胞接着性配列の前記一方の末端側に結合し複数の酸性アミノ酸と複数の塩基性アミノ酸とが1つずつ交互に結合してなる交互配列と、を有するオリゴペプチドで被覆されていることを特徴とする。本発明によれば、医療への応用に適した細胞及び/又は細胞組織体を効率よく製造する培養装置を提供することができる。また、前記培養装置において、前記電極層は、培養液中に浮いた状態で保持される多孔質膜の表面に形成されていることとしてもよい。本発明によれば、医療への応用に適した細胞及び/又は細胞組織体を効率よく製造する培養方法及び培養装置を提供することができる。以下に、本発明の一実施形態について説明する。なお、本発明は、本実施形態で示す例に限られるものではない。図1は、本実施形態に係る培養方法以下、本方法という。の一例に含まれる主な工程を示す説明図である。図2は、本実施形態で使用するオリゴペプチドで被覆された電極層の一例を示す説明図である。図3は、本実施形態で使用するオリゴペプチドの一例を示す説明図である。図4A~図4Cは、本実施形態において細胞を培養し回収する過程の一例についての説明図である。本方法は、電極層30に接着した細胞50を培養する方法であって、一方の末端を構成しチオレートを介して当該電極層30に結合する末端アミノ酸11と、他方の末端を構成し細胞接着性のアミノ酸配列からなる細胞接着性配列14と、当該細胞接着性配列14の当該一方の末端側に結合し複数の酸性アミノ酸13aと複数の塩基性アミノ酸13bとが1つずつ交互に結合してなる交互配列13と、を有するオリゴペプチド以下、接着性オリゴペプチド10という。で被覆された当該電極層30に当該細胞50を接着させて培養する第一工程以下、培養工程S1という。と、当該細胞50が接着している当該電極層30に、当該接着性オリゴペプチド10が還元脱離する電位を印加して、当該細胞50を当該電極層30から脱離させる第二工程以下、脱離工程S2という。と、を含む。培養工程S1においては、まず、接着性オリゴペプチド10で被覆された電極層30を準備する。接着性オリゴペプチド10は、上述のように末端アミノ酸11、交互配列13及び細胞接着性配列14を含むアミノ酸配列からなるオリゴペプチドであれば特に限られない。接着性オリゴペプチド10を構成するアミノ酸の数は、特に限られないが、当該接着性オリゴペプチド10は、例えば、8~100個のアミノ酸からなるペプチドとすることができ、10~30個のアミノ酸からなるペプチドとすることが好ましい。図2及び図3に示す例において、接着性オリゴペプチド10は、17個のアミノ酸から構成されるペプチドである。また、接着性オリゴペプチド10は、電極層30に自己組織化単分子膜SelfAssembledMonolayer:SAMを形成するオリゴペプチドであることが好ましい。すなわち、接着性オリゴペプチド10は、例えば、4つ以上のアミノ酸からなる交互配列13を有することが好ましい。この場合、隣接する接着性オリゴペプチド10の分子間に効果的な静電的相互作用が生じることにより、電極層30に当該接着性オリゴペプチド10の自己組織化単分子膜を確実に形成することができる。図2及び図4A~図4Cに示す例において、電極層30には、接着性オリゴペプチド10を含み当該電極層30を被覆する自己組織化単分子膜からなるオリゴペプチド層100が形成されている。末端アミノ酸11は、チオレートを介して電極層30に結合するアミノ酸であれば特に限られない。すなわち、末端アミノ酸11は、電極層30との間でチオレートを介した結合を形成し得る官能基を有する任意のアミノ酸である。チオレートを形成し得る官能基は、例えば、チオール基-SH、ジスルフィド-S-S-及びスルフィド-S-からなる群より選択される1種以上とすることができる。図2及び図3に示す例において、末端アミノ酸11は、接着性オリゴペプチド10のN末端を構成するシステインCである。接着性オリゴペプチド10が末端アミノ酸11を有することにより、当該接着性オリゴペプチド10による電極層30の被覆及び後述する当該接着性オリゴペプチド10の還元脱離を効果的に行うことができる。細胞接着性配列14は、細胞接着性のアミノ酸配列であれば特に限られない。すなわち、細胞接着性配列14は、例えば、使用する細胞50の表面に存在する分子例えば、インテグリン等のタンパク質や、糖鎖に特異的に結合する特定のアミノ酸配列以下、特定アミノ酸配列という。を含むことができる。図2及び図3に示す例において、細胞接着性配列14は、接着性オリゴペプチド10のC末端を構成し、アルギニンRとグリシンGとアスパラギン酸Dとが結合してなる、いわゆるRGD配列を特定アミノ酸配列として含んでいる。細胞接着性配列14は、特定アミノ酸配列からなるアミノ酸配列とすることができ、また、当該特定アミノ酸配列のN末端側及び/又はC末端側に他のアミノ酸がさらに結合してなるアミノ酸配列とすることもできる。細胞接着性配列14に含まれる、特定アミノ酸以外のアミノ酸は、例えば、中性アミノ酸とすることができる。中性アミノ酸は、例えば、アラニンA、アスパラギンN、システインC、グルタミンQ,グリシンG、イソロイシンI、ロイシンL、メチオニンM、フェニルアラニンF、プロリンP、セリンS、トレオニンT、トリプトファンW、チロシンY及びバリンVからなる群より選択される1種以上とすることができる。図2及び図3に示す例において、細胞接着性配列14は、RGD配列と、当該RGD配列のN末端側に結合したグリシンGと、当該RGD配列のC末端側に順次結合したセリンS及びプロリンPと、を含んでいる。細胞接着性配列14を構成するアミノ酸の数は、特に限られないが、当該細胞接着性配列14は、例えば、3~50個のアミノ酸からなるアミノ酸配列とすることができ、5~25個のアミノ酸からなるアミノ酸配列とすることが好ましい。図2及び図3に示す例において、細胞接着性配列14は、6個のアミノ酸からなるアミノ酸配列である。接着性オリゴペプチド10が細胞接着性配列14を有することにより、細胞50の当該接着性オリゴペプチド10を介した電極層30への接着を確実に達成することができる。交互配列13は、酸性アミノ酸13aと塩基性アミノ酸13bとが1つずつ交互に結合することにより形成された、全体として複数の当該酸性アミノ酸13aと複数の当該塩基性アミノ酸13bとからなるアミノ酸配列であれば特に限られない。酸性アミノ酸13aは、例えば、アスパラギン酸D及びグルタミン酸Eからなる群より選択される1種又は2種とすることができる。塩基性アミノ酸13bは、例えば、リシンK、アルギニンR及びヒスチジンHからなる群より選択される1種以上とすることができる。交互配列13は、これら酸性アミノ酸13aと塩基性アミノ酸13bとを任意の組み合わせで含むことができる。図2及び図3に示す例において、交互配列13は、細胞接着性配列14のN末端側に結合した、4つのリシンKと3つのグルタミン酸Eとが1つずつ交互に結合してなるアミノ酸配列である。交互配列13を構成する酸性アミノ酸13aの数と塩基性アミノ酸13bの数とは、一方が他方より1つだけ多いこととしてもよく、同一であってもよい。酸性アミノ酸13aの数及び塩基性アミノ酸13bの数の一方が他方より1つだけ多い場合であっても、例えば、交互配列13が酸性アミノ酸13a及び塩基性アミノ酸13bを少なくとも2つずつ有することにより、細胞接着性配列14と結合している交互配列13の先端部分合計4つ以上のアミノ酸からなる部分は電気的に十分中和される。交互配列13を構成するアミノ酸の数は、特に限られないが、当該交互配列13は、例えば、4~50個のアミノ酸からなるアミノ酸配列とすることができ、5~25個のアミノ酸からなるアミノ酸配列とすることが好ましい。図2及び図3に示す例において、交互配列13は、3個の酸性アミノ酸13aと4個の塩基性アミノ酸13bとを含む7個のアミノ酸からなるアミノ酸配列である。接着性オリゴペプチド10が交互配列13を有することにより、例えば、当該接着性オリゴペプチド10又は電極層30に対するタンパク質等の細胞接着を促進する物質の非特異的な吸着を効果的に回避又は低減することができる。接着性オリゴペプチド10は、上述の末端アミノ酸11、交互配列13及び細胞接着性配列14が順次結合してなるアミノ酸配列からなるペプチドとすることができる。また、接着性オリゴペプチド10は、例えば、末端アミノ酸11と交互配列13との間に配置される中間配列12をさらに含むこともできる。中間配列12は、一方の末端側で末端アミノ酸11と結合し、他方の末端側で交互配列13と結合するアミノ酸配列であれば特に限られない。中間配列12は、分子サイズが比較的小さいアミノ酸から構成されることが好ましい。また、中間配列12は、上述したような中性アミノ酸から構成されることが好ましい。すなわち、中間配列12は、例えば、アラニン及びグリシンからなる群より選択される1種又は2種からなるアミノ酸配列とすることができる。中間配列12を構成するアミノ酸の数は、特に限られないが、当該中間配列12は、例えば、0~50個のアミノ酸からなるアミノ酸配列とすることができ、2~10個のアミノ酸からなるアミノ酸配列とすることが好ましい。図2及び図3に示す例において、中間配列12は、3つのグリシンが結合してなるアミノ酸配列である。接着性オリゴペプチド10が中間配列12を有することにより、細胞接着性配列14及び/又は交互配列13と電極層30との相互作用を効果的に回避又は低減することができる。電極層30は、その表面に接着性オリゴペプチド10がチオレートを介して還元脱離可能に結合でき、且つ当該接着性オリゴペプチド10の還元脱離において作用極として機能する導電性層であれば特に限られない。すなわち、電極層30は、例えば、貴金属例えば、金、白金、銀、銅、半導体例えば、シリコン、セレン化亜鉛、炭化ケイ素及び金属酸化物例えば、酸化インジウムスズ、酸化亜鉛、酸化スズからなる群より選択される1種以上の導電性材料からなる層とすることができる。図2及び図4A~図4Cに示す例において、電極層30は、貴金属例えば、金で形成された薄膜である。接着性オリゴペプチド10による電極層30の被覆は、例えば、図3に示すように、当該電極層30との間でチオレートを介した結合を形成し得る官能基を含む末端アミノ酸11を有する遊離の接着性オリゴペプチド10を使用して行うことができる。すなわち、この遊離の接着性オリゴペプチド10と電極層30とを溶液中で接触させる例えば、遊離の接着性オリゴペプチド10を含有する溶液中に電極層30を浸漬して所定時間保持することにより、図2に示すように、当該接着性オリゴペプチド10が当該電極層30との間で自発的にチオレートを形成して当該電極層30に結合する。電極層30に形成されるオリゴペプチド層100は、図2に示すように、上述の接着性オリゴペプチド10に加えて、細胞接着性のアミノ酸配列を有しない以外は当該接着性オリゴペプチド10と同様のアミノ酸配列から構成される他のオリゴペプチド以下、非接着性オリゴペプチド20というを含むことができる。非接着性オリゴペプチド20は、図2に示すように、一方の末端を構成しチオレートを介して当該電極層30に結合する末端アミノ酸21と、他方の末端を構成し複数の酸性アミノ酸23aと複数の塩基性アミノ酸23bとが1つずつ交互に結合してなる交互配列23と、を有するペプチドである。非接着性オリゴペプチド20は、接着性オリゴペプチド10の交互配列13と同一のアミノ酸配列からなる交互配列23を有することが好ましい。また、非接着性オリゴペプチド20は、さらに、接着性オリゴペプチド10の末端アミノ酸11と同一のアミノ酸配列からなる末端アミノ酸21を有することとしてもよい。図2に示す例において、非接着性オリゴペプチド20の末端アミノ酸21及び交互配列23のアミノ酸配列は、それぞれ接着性オリゴペプチド10の末端アミノ酸11及び交互配列13のアミノ酸配列と同一である。また、非接着性オリゴペプチド20の交互配列23は、当該非接着性オリゴペプチド20の末端部分を構成する。このため、交互配列23は、その自由端すなわち、非接着性オリゴペプチド20の自由端を構成するアミノ酸の電荷を打ち消すよう、酸性アミノ酸23a及び塩基性アミノ酸23bの一方が他方より1つだけ多いアミノ酸配列からなることが好ましい。図2に示す例において、非接着性オリゴペプチド20の交互配列23は、その自由端C末端を構成するリシンKの負電荷を打ち消すよう、リシンKの数がグルタミン酸Eの数より1つだけ多いアミノ酸配列から構成されている。そして、接着性オリゴペプチド10の交互配列13は、こうして設計された非接着性オリゴペプチド20の交互配列23と同一のアミノ酸配列から構成されている。この結果、隣接する接着性オリゴペプチド10の分子と非接着性オリゴペプチド20の分子との間、及び隣接する接着性オリゴペプチド10の分子間においても効果的な静電的相互作用が生じ、電極層30に自己組織化単分子膜からなるオリゴペプチド層100が形成されている。非接着性オリゴペプチド20を含むオリゴペプチド層100の形成は、例えば、上述の接着性オリゴペプチド10の場合と同様に、電極層30との間でチオレートを介した結合を形成し得る官能基を含む末端アミノ酸21を有する遊離の当該非接着性オリゴペプチド20例えば、図3に示す接着性オリゴペプチド10から細胞接着性配列14を除去したアミノ酸配列からなるオリゴペプチドを使用して行うことができる。すなわち、例えば、遊離の接着性オリゴペプチド10及び遊離の非接着性オリゴペプチド20を含有する溶液中に電極層30を浸漬することにより、図2に示すように、当該接着性オリゴペプチド10及び非接着性オリゴペプチド20を、チオレートを介して当該電極層30に結合させて、オリゴペプチド層100を形成することができる。また、このような遊離の非接着性オリゴペプチド20を使用して、接着性オリゴペプチド10で被覆された電極層30を作製することもできる。すなわち、例えば、まず、上述のようにして電極層30を非接着性オリゴペプチド20で被覆する。次いで、電極層30に結合した非接着性オリゴペプチド20と、細胞接着性配列14を含む遊離のペプチドと、の化学反応により、当該非接着性オリゴペプチド20の交互配列23の先端に当該細胞接着性配列14を結合させる。この結果、細胞接着性配列14を有する接着性オリゴペプチド10により被覆された電極層30が得られる。こうして、電極層30には、接着性オリゴペプチド10を含むオリゴペプチド層100が形成される。なお、図2に示す例では、接着性オリゴペプチド10と非接着性オリゴペプチド20とからなるオリゴペプチド層100が形成されているが、これに限られず、例えば、接着性オリゴペプチド10からなるオリゴペプチド層100を形成することもできる。オリゴペプチド層100が接着性オリゴペプチド10に加えて非接着性オリゴペプチド20を含む場合には、当該接着性オリゴペプチド10と当該非接着性オリゴペプチド20との比率を変えることにより当該オリゴペプチド層100に対する細胞50の接着性を調整することができる。接着性オリゴペプチド10と非接着性オリゴペプチド20との比率接着性オリゴペプチド10の含有量:非接着性オリゴペプチド20の含有量は、実現すべき細胞50の接着の程度や当該細胞50の脱離効率に応じて適宜決定することができ、例えば、モル比率で0.1:100~100:0とすることができる。本実施形態に係る培養装置以下、本装置という。は、このように接着性オリゴペプチド10で被覆された、細胞50を接着させて培養するための電極層30を有する培養装置である。本方法は、本装置を使用して好ましく実施することができる。本装置は、図4A~図4Cに示すように、接着性オリゴペプチド10で被覆された電極層30を含み、当該電極層30に接着した細胞50を培養液60中に保持する培養部40を有している。培養部40は、細胞50が接着した電極層30及び培養液を収容できる器具であれば特に限られず、例えば、培養ディッシュ等の培養容器である。図4A~図4Cに示す例において、培養部40は、培養ディッシュである。電極層30は、図2及び図4A~図4Cに示すように、基材41の表面に形成することができる。すなわち、電極層30は、例えば、基材41の表面に形成された導電性の薄膜とすることができる。基材41は、その表面に電極層30を形成できる材料からなる部材であれば特に限られない。すなわち、基材41は、例えば、そのままで電極材料として使用するには必ずしも好ましくない金属材料や、ガラス、合成樹脂ポリスチレンやポリプロピレン等等の非金属材料からなる部材とすることができる。電極層30上の細胞50を光学顕微鏡により観察する上では、基材41は、透明性のある材料から構成されることが好ましい。図4A~図4Cに示す例において、基材41は、透明な樹脂で成形された培養ディッシュの底部である。基材41の形状は、その表面に電極層30を形成できれば特に限られない。すなわち、基材41は、例えば、平板状、膜状、メッシュ状、棒状の成形体とすることができる。また、電極層30が形成される基材41の表面は、例えば、平坦な表面、凹凸が形成された表面例えば、多孔質体の表面、湾曲した表面とすることができる。図4A~図4Cに示す例において、基材41は、平板状の部材であり、その平坦な表面に電極層30が形成されている。また、培養部40は、図4A~図4Cに示すように、電極層30に電位を印加するために、当該電極層30と電気的に接続された電気接続部30aを有することができる。電気接続部30aの配置は、電極層30に電位を印加可能となるように当該電気接続部30aが当該電極層30と電気的に接続されれば特に限られない。すなわち、電気接続部30aは、例えば、培養液60に浸漬されない培養部40の一部に形成され、当該培養液60に浸漬される電極層30と電気的に接続するよう形成される。図4A~図4Cに示す例において、電気接続部30aは、培養部40を構成する培養ディッシュの底面に形成されて培養液60に浸漬される電極層30から、当該培養液60に浸漬されない当該培養ディッシュの側壁まで延びるように形成されている。電気接続部30aを構成する材料は、導電性の材料であれば特に限られず、例えば、上述の電極層30を構成し得る材料と同一の材料とすることができる。図4A~図4Cに示す例において、電気接続部30aは、電極層30と同一の貴金属例えば、金で形成された薄膜である。本方法の培養工程S1においては、好ましくは上述の本装置を使用して、接着性オリゴペプチド10で被覆された電極層30に細胞50を接着させて培養する。細胞50は、接着性オリゴペプチド10を介して電極層30に接着できる細胞であれば特に限られない。すなわち、ヒト又はヒト以外の動物サル、ブタ、イヌ、ラット、マウス等の任意の臓器や組織肝臓、心臓、膵臓、腎臓、脳、神経、皮膚、血液等由来の細胞を使用することができる。具体的に、例えば、臓器や組織の酵素処理や血液の分離処理によって採取された初代細胞や、樹立された株化細胞を使用することができる。また、分化した細胞のみならず、胚性幹細胞embryonicstemcell、多能性幹細胞pluripotentstemcell等の未分化細胞を使用することもできる。さらに、これらの細胞に遺伝子操作等の人為的処理を施した細胞を使用することもできる。例えば、iPSinducedpluripotentstemcell細胞や、iPS細胞を分化させることにより作製された細胞を使用することもできる。本方法及び本装置により培養された細胞50及び/又は当該細胞50から形成された細胞組織体を回収して医療分野の技術再生医療技術や人工臓器等に利用する場合には、ヒト又はヒト以外の哺乳動物由来の細胞を好ましく使用することができ、ヒト由来の細胞を特に好ましく使用することができる。細胞50としては、その生存や増殖に足場を必要とする接着性細胞、又はその生存や増殖に足場を必要としない非接着性細胞のいずれを使用することもでき、接着性細胞を好ましく使用することができる。また、後述するように、培養工程S1において、細胞50が二次元的又は三次元的に集合した細胞組織体を培養する場合には、互いに結合を形成して当該細胞50の集合体を形成することができる細胞を好ましく使用することができる。細胞50としては、1種類の細胞を単独で使用することもできるが、2種類以上の細胞が任意の数比率で混在する細胞群を使用することもできる。電極層30上での細胞50の培養は、培養液60中において当該細胞50を当該電極層30に接着させて所定温度例えば、37°Cで所定時間例えば、数時間~数週間又は数カ月保持することにより行うことができる。すなわち、例えば、まず、図4Aに示すような電極層30を含む培養部40を準備し、次いで、当該培養部40に、細胞50を分散した培養液60を入れて、37°Cで数時間静置することにより、図4Bに示すように、当該培養液60中においてオリゴペプチド層100を介して当該細胞50を当該電極層30に接着させることができる。培養液60としては、細胞50の生存状態や機能等を維持することができるよう、必要な塩類や栄養成分等を適切な濃度で含む水溶液であれば特に限られない。すなわち、例えば、DMEMDulbeccosModifiedEaglesMedium等の基礎培地に抗生物質等を添加した培養液や、リン酸緩衝液と、グリシン-アルギニン-グリシン-アスパラギン酸-セリン配列からなる細胞接着性のRGDペプチドペプチド研究所製と、の結合反応により生成された接着性アルカンチオールを準備し、上述の場合と同様に、当該接着性アルカンチオールを結合させた金薄膜表面を有する電極基板以下、アルカンチオール電極という。を得た。また、接着性オリゴペプチド10、非接着性オリゴペプチド20及び接着性アルカンチオールのいずれも結合させていない金薄膜表面を有する電極基板以下、金電極という。も準備した。こうして、10接着性電極、100接着性電極、アルカンチオール電極及び金電極という4種類の電極基板を準備した。[細胞の準備]細胞としては、3T3線維芽細胞理化学研究所より購入を使用した。培養液としては、DMEMCambrex製に牛胎児血清FetalBovineSerum:FBSを10添加した培養液を使用した。この培養液を12mL入れた直径100mmのポリスチレン製ディッシュBDFalcon、日本ベクトンディッキンソン株式会社製内で細胞を3日間、前培養することにより、増殖させた。増殖後の細胞をトリプシン処理によって回収した。[細胞の接着及び培養]上述のように前培養した細胞を、培養液中に2.5×105個mLの密度で懸濁し、細胞分散液を調製した。そして、この細胞分散液を、上述のようにして準備した4種類の電極基板のいずれかが収容された直径35mmのディッシュに2mL入れた。すなわち、細胞は、5×105個/ディッシュの密度で播種した。そして、温度37°C、水蒸気飽和させた二酸化炭素5/95空気の雰囲気下にて、細胞を電極表面で24時間培養した。[電位印加による細胞の脱離]上述のようにして培養した細胞が接着した電極基板を作用極とし、白金板を対極とし、銀/塩化銀内部溶液:飽和KCl電極を参照極として、3電極系を構成した。直径35mmのポリスチレン製ディッシュBDFalcon、日本ベクトンディッキンソン株式会社製の底面に、作用極の電極基板を水平に固定し、リン酸緩衝液中に浸漬した。さらに、このディッシュ内のリン酸緩衝液には、作用極に加え、対極、参照極も浸漬した。電位印加部としては、ポテンショスタット北斗電工株式会社製を使用した。そして、ポテンショスタットにより、作用極に、非接着性オリゴペプチド20の還元脱離ピーク電位-0.6Vより0.4Vだけ負である-1.0Vの一定電位を連続的に印加した。次いで、電位の印加を開始した直後、及び電位の印加を開始してから1分、2分、3分が経過した各時点で、作用極の電極表面に接着している細胞の数を位相差顕微鏡下でカウントした。そして、電位の印加開始直後に電極表面に接着している細胞の数を100とした場合における、各電位印加時間で当該電極表面に接着している細胞の数の割合を評価した。図13には、評価の結果を示す。図13において、横軸は電位の印加を開始してから経過した時間分、縦軸は、各電位印加時間で電極表面に接着している細胞数の割合を示す。黒丸印は100接着性電極を使用した場合の結果オリゴペプチド100接着性/金、白四角印は10接着性電極を使用した場合の結果オリゴペプチド10接着性/金、白丸印はアルカンチオール電極を使用した場合の結果アルカンチオール/金、白三角印は金電極を使用した場合の結果金、をそれぞれ示している。図13に示すように、金薄膜からなる電極表面に細胞を直接接着させた場合金電極を使用した場合は、電位の印加によってほとんど細胞は脱離しなかった。一方、接着性オリゴペプチド10又は接着性アルカンチオールを介して細胞を接着させた場合10接着性電極、100接着性電極又はアルカンチオール電極を使用した場合は、電位印加によって細胞が脱離することが示された。ただし、アルカンチオール電極を使用した場合には、電位印加開始から2分経過した時点では約45の細胞が脱離せずに残存していた。これに対し、接着性オリゴペプチド10を使用した場合には、接着性アルカンチオールを使用した場合と比較して、より早く細胞が脱離した。すなわち、電位印加開始から2分経過後には、10接着性電極及び100接着性電極の表面に接着していた細胞のほとんどが脱離し、リン酸緩衝液中に浮遊した。そして、3分後に残存している細胞数はほぼ0であった。特に、100接着性電極を使用した場合には、極めて迅速な細胞の脱離が達成された。このように、接着性オリゴペプチド10を介して細胞を電極表面に接着させることにより、電位の印加によって従来よりも効率よく且つ確実に細胞を表面から脱離できることが確認された。[細胞組織体シート脱離試験用電極の準備]上述の実施例1と同様に、金薄膜が形成されたガラス基板からなる電極基板を、接着性オリゴペプチド10を1.0μMで含有するオリゴペプチド水溶液中に一晩浸漬させることによって、当該接着性オリゴペプチド10を結合させた金薄膜表面電極層30に相当を有する電極基板を作製した。[細胞の接着及び培養]3T3線維芽細胞理化学研究所より購入を、培養液中に5.0×105個mLの密度で懸濁し、細胞分散液を調製した。そして、この細胞分散液を、電極基板が収容された直径35mmのディッシュに2mL入れた。細胞の播種密度以外は上述の実施例1と同様の条件下で細胞を1週間培養した。この結果、培養開始から48時間が経過した時点で、細胞は電極表面に接着するとともに、互いに二次元的に結合を形成してシート状の細胞組織体を形成した。すなわち、電極表面に接着した細胞組織体シートが形成された。[電位印加による細胞組織体シートの脱離]上述の実施例1と同様に、接着性オリゴペプチド10及び非接着性オリゴペプチド20が結合した電極基板からなる作用極を含む3電極系を作製した。そして、ポテンショスタットにより、リン酸緩衝液中において、作用極に-1.0Vの一定電位を連続的に印加した。この結果、電位の印加を開始してから5分が経過した時点で、細胞組織体シートの全体が電極表面から脱離し、リン酸緩衝液中に浮遊した。すなわち、細胞組織体シートが接着した作用極に一定の電位を連続的に印加することにより、シート状の形態を維持したまま当該細胞組織体シートを当該作用極の電極表面から脱離させることができた。さらに、電極表面から剥離した細胞組織体シートに含まれる細胞の生存状態を確認するために、回収した当該細胞組織体シートを、10μg/mLの濃度のFluoresceinDiacetateFDA、和光純薬工業株式会社製と40μg/mLの濃度のEthidiumBromideEB、和光純薬工業株式会社製と、を含むリン酸緩衝液中に5分間浸漬した。こうして、細胞組織体シートに含まれる生存している細胞をFDAにより、死滅している細胞をEBにより、それぞれ選択的に蛍光染色した。その結果、回収された細胞組織体シートに含まれる細胞のほとんどが生存していることが確認された。このように、本方法によれば、電極表面で培養した細胞組織体シートを非侵襲的に、効率よく且つ確実に脱離させて回収できた。すなわち、本方法は、細胞組織体シートの製造方法として極めて有用であることが確認できた。[多孔質膜に形成された電極層を有する培養装置の作製]多孔質膜70に形成された電極層30を使用して細胞組織体シートを製造した。すなわち、図14に示すように、多孔質膜70からなる底部を有する第一の培養容器42と、当該多孔質膜70が培養液中に浮遊した状態で保持されるよう当該第一の培養容器42を保持する第二の培養容器43とを使用して、図7A~図7Cに示すような培養系を構築した。なお、図14に示す例において、第二の培養容器43は、多孔質膜70が培養液中に浮遊した状態で保持されるよう第一の培養容器42を支持しつつ当該第二の培養容器43内に収容される、シリコン製のリング43aを有していた。第一の培養容器42としては、セルインサートメンブレンCellCultureInsert353493、BDFalconTM製を使用した。この第一の培養容器42は、その底部として、厚さが約20~25μmであり、直径が約0.4μmの貫通孔73が多数形成され、開口率が約12.6である、ポリエチレンテレフタレート製の多孔質膜70を有していた。図15には、使用した多孔質膜70の電子顕微鏡写真を示す。図15に示すように、この多孔質膜70には、その一方の表面から他方の表面まで貫通する多数の孔73が形成されていた。多孔質膜70の表面図6に示す上面71に相当する表面への電極層30の形成は次のようにして行った。スパッタデポジション装置CFS-4ES、芝浦メカトロニクス株式会社製を使用して、出力100W、アルゴン雰囲気0.3Paの条件にて、インサートメンブレンの多孔質膜70の表面にクロムを2分間スパッタリングし、厚さ約4nmのクロム薄膜を形成した。さらに、同条件にてガラス基板のクロム薄膜の上に金を2分間スパッタリングし、厚さ約40nmの金薄膜電極層30を形成した。また、多孔質膜70の表面に作製した電極層30へ、接着性オリゴペプチド10を1.0μMで含有するオリゴペプチド水溶液中に一晩浸漬させた。その後、電極基板を純水で洗浄した。このようにして、接着性オリゴペプチド10を結合させた電極層30を有する多孔質膜70からなる電極基板を得た。[細胞の接着及び培養]前培養した3T3線維芽細胞を、培養液中に5.0×105個mLの密度で懸濁し、細胞分散液を調製した。培養液としては、DMEMCambrex製に牛胎児血清FetalBovineSerum:FBSを10添加した培養液を使用した。そして、この細胞分散液を、上述のようにして準備したインサートメンブレンの多孔質膜70上に2mL入れた。すなわち、細胞は、1×106個/インサートメンブレンの密度で播種した。また、第一の培養容器42を保持する第二の培養容器43には培養液を25mL入れた。温度37°C、水蒸気飽和させた二酸化炭素5/95空気の雰囲気下にて、細胞を電極表面で2週間培養することで、細胞組織体シートを作製した。[電位印加による細胞組織体シートの脱離]上述のようにして培養した細胞組織体シートが接着した電極層30を有する多孔質膜70を作用極とし、白金板を対極とし、銀/塩化銀内部溶液:飽和NaCl電極を参照極として、3電極系を構成した。培養容器43に、作用極を有する培養容器42を固定し、当該培養容器42内をリン酸緩衝液5mLで満たした。さらに、この培養容器42内のリン酸緩衝液には、対極、参照極も浸漬した。電位印加部としては、ポテンショスタット北斗電工株式会社製を使用した。そして、ポテンショスタットにより、作用極に、-1.0Vの一定電位を5分間印加した。さらに、この電圧の印加とともに、培養容器42をシリコン製のリング43a側すなわち下方に押し込むことで、多孔質膜70の下面72側から上面71側へ孔73を介してリン酸緩衝液を送液することで、当該多孔質膜70から細胞組織体シートを浮き上がらせて回収した。上述のようにして電極表面から脱離し回収された細胞組織体シート51の断面をヘマトキシリンエオジンHE染色し、当該断面を位相差顕微鏡観察した。図16A~図16Cには、その観察結果を示す。図16Aは、培養ディッシュの底面に形成された電極表面で7日間培養され回収された細胞組織体シート51の観察結果を示す。図16Bは、多孔質膜70の表面に形成された電極表面で7日間培養され回収された細胞組織体シート51の観察結果を示す。図16Cは、多孔質膜70の表面に形成された電極表面で21日間培養され回収された細胞組織体シート51の観察結果を示す。図16A及び図16Bに示すように、多孔質膜70の表面に形成された電極表面で細胞を培養することにより図16B、非多孔質の表面に形成された電極表面を使用する場合図16Aに比べて、厚さが顕著に大きい細胞組織体シート51を製造することができた。さらに、図16Cに示すように、多孔質膜70の表面に形成された電極表面における細胞の培養を継続することにより、さらに厚さの大きい細胞組織体シート51を製造することができた。[細胞組織積層体の作製]回収した細胞組織体シート上に、新たに回収した2つ目の細胞組織体シートを重ね、温度37°C、水蒸気飽和させた二酸化炭素5/95空気の雰囲気下にて5分間インキュベートした。さらに、新たな3つ目の細胞組織体シートをその上から重ね、同様にインキュベートすることで、細胞組織積層体を製造した。図17には、上述のようにして作製された細胞組織積層体52の断面をHE染色し、当該断面を位相差顕微鏡観察した結果を示す。図17に示すように、3枚の細胞組織体シートが積層され一体化することにより、150~250μmの厚さを有する細胞組織積層体52が得られた。この細胞組織積層体52は、例えば、ピンセットでつまんで持ち上げても破れない程度に十分な強度を有していた。[回収された細胞の接着能及び増殖能の評価]上述の実施例3で使用したインサートメンブレンの多孔質膜70の表面に、接着性オリゴペプチド10を結合させた電極層30を形成し、当該電極層30上で3T3線維芽細胞を前培養した。培養液としては、DMEMCambrex製に牛胎児血清FetalBovineSerum:FBSを10添加した培養液を使用した。培養した細胞が接着した電極層30を有する多孔質膜70を作用極とし、白金板を対極とし、銀/塩化銀内部溶液:飽和NaCl電極を参照極として、3電極系を構成した。上述の実施例3と同様、培養容器43に、作用極を有する培養容器42を固定し、当該培養容器42内を培養液5mLで満たした。さらに、この培養容器42内の培養液には、対極、参照極も浸漬した。電位印加部としては、ポテンショスタット北斗電工株式会社製を使用した。そして、ポテンショスタットにより、作用極に、-1.0Vの一定電位を5分間印加した。その結果、細胞は電極層30から脱離し、回収された。こうして回収された細胞を、2.85×104個mLの密度で培養液に懸濁し、細胞分散液を調製した。そして、この細胞分散液を、直径35mmのポリスチレン製ディッシュBDFalcon、日本ベクトンディッキンソン株式会社製の底面に2mL入れた。すなわち、細胞は5.7×104個/ディッシュの密度で播種した。そして、温度37°C、水蒸気飽和させた二酸化炭素5/95空気の雰囲気下にて、細胞を3日間培養し、その間、位相差顕微鏡下で細胞の数を1日おきに計測した。一方、対照実験として、3T3線維芽細胞をポリスチレン製ディッシュ上で前培養し、その後、当該細胞をトリプシン処理によって回収した。そして、回収された細胞を、上述の場合と同一の条件で、ポリスチレン製ディッシュの底面に懸濁し、位相差顕微鏡下で細胞の数を1日おきに計測した。図18には、細胞の数を計測した結果を示す。図18において、横軸は培養日数日を示し、縦軸は、各培養日において、ポリスチレン製ディッシュの底面1mm2あたりに接着していた細胞の数細胞密度cellsmm2を示す。また、図18において、黒塗り丸印は電気化学的に接着性オリゴペプチド10の還元脱離により脱離させた細胞を培養した場合の結果を示し、白抜き丸印はトリプシン処理により脱離した細胞を培養した場合の結果を示す。図18に示すように、接着性オリゴペプチド10の還元脱離により回収された細胞は、ポリスチレン製ディッシュの底面に接着して増殖した。そして、この細胞の増殖速度倍加時間:15±1.6時間は、対照実験においてトリプシン処理により回収された細胞のそれ倍加時間:16±1.5時間と同等であった。すなわち、接着性オリゴペプチド10の還元脱離のための電位印加が細胞の活性に与える影響はほとんどないことが確認された。[多孔質膜に形成された電極層を有する培養装置の作製]上述の実施例3と同様に、図14に示すように、接着性オリゴペプチド10を結合させた電極層30を有する多孔質膜70からなる底部を有する第一の培養容器42インサートメンブレンと、当該多孔質膜70が培養液中に浮遊した状態で保持されるよう当該第一の培養容器42を保持する第二の培養容器43とを使用して、図7A~図7Cに示すような培養系を構築した。[細胞の接着及び培養]細胞としては、再生医療において有用であるヒト間葉系幹細胞MesenchymalStemCell:MSCを使用した。このMSCを、培養液中に5.0×105個mLの密度で懸濁し、細胞分散液を調製した。培養液としては、DMEMCambrex製に牛胎児血清FetalBovineSerum:FBSを10、抗生物質‐抗真菌剤を1、L‐グルタミン1を添加した培養液を使用した。そして、この細胞分散液を、上述のようにして準備したインサートメンブレンの多孔質膜70上に2mL入れた。すなわち、MSCは、1×106個/インサートメンブレンの密度で播種した。また、第一の培養容器42を保持する第二の培養容器43には培養液を25mL入れた。温度37°C、水蒸気飽和させた二酸化炭素5/95空気の雰囲気下にて、細胞を電極表面で4日間培養することで、MSCが集合して形成された細胞組織体シートを作製した。[コラーゲンゲルの調製]細胞組織体シートの支持体として、当該細胞組織体シート上にコラーゲンゲルの層を形成した。コラーゲンゲルは、コラーゲン溶液CellmatrixTypeI-A、新田ゼラチン製を使用した形成した。コラーゲン溶液と、10倍に濃縮された培養液と、緩衝液とを8:1:1の体積比率で混合した。そして、得られた混合溶液を細胞組織体シート上に滴下し、温度37°C、水蒸気飽和させた二酸化炭素5/95空気の雰囲気下にて、30分間インキュベートすることで、当該細胞組織体シート上にコラーゲンゲル層を形成した。[電位印加による細胞組織体シートの脱離]上述のようにして培養した細胞が接着した電極層30を有する多孔質膜70を作用極とし、白金板を対極とし、銀/塩化銀内部溶液:飽和NaCl電極を参照極として、3電極系を構成した。培養容器43に、作用極を有する培養容器42を固定し、当該培養容器42内をリン酸緩衝液5mLで満たした。さらに、この培養容器42内のリン酸緩衝液に、対極、参照極も浸漬した。電位印加部としては、ポテンショスタット北斗電工株式会社製を使用した。そして、ポテンショスタットにより、作用極に、-1.0Vの一定電位を5分間印加するとともに、培養容器42をシリコン製のリング43a側に押し込むことで、多孔質膜70の下面72側から上面71側へ孔73を介してリン酸緩衝液を送液することで、当該多孔質膜70から細胞組織体シートを浮き上がらせて回収した。[回収された細胞組織体シートの生存状態の評価]上述のようにして電位印加により電極層30から脱離させ回収した細胞組織体シートを、上述の実施例2と同様に、FluoresceinDiacetateFDAで染色し、蛍光顕微鏡にて撮影した。図19には、染色された細胞組織体シートを蛍光顕微鏡で撮影して得られた写真を示す。図19において、白色又はグレーで示される部分がFDAで染色された細胞組織体シートを示し、黒色の部分はバックグラウンドを示す。図19に示すように、回収された細胞組織体シートの全体がFDAにより蛍光染色された。すなわち、再生医療において有用であるMSCから形成した細胞組織体シートは、電位印加により効率よく回収され、且つ回収後の当該細胞組織体シートを構成するMSCは生存していることが確認された。"