"核酸が共有結合により支持体に固定化された核酸アレイを、ポリプロピレン製の保存ケースに保存する、核酸アレイの保存方法。前記核酸アレイを、真空にて、又は相対湿度が10以下に保持された雰囲気下で保存する、請求項1に記載の核酸アレイの保存方法。前記核酸アレイを、乾燥剤と共に保存する、請求項1又は2に記載の核酸アレイの保存方法。前記雰囲気が、不活性ガス雰囲気である請求項2又は3に記載の核酸アレイの保存方法。前記核酸アレイが、反応性基A1が固定化された支持体に対し、核酸を接触させ、該核酸を該支持体に固定化させたものであり、該反応性基A1が、式1:-L-SO2-Xで表される基である、請求項1~4のいずれか1項に記載の核酸アレイの保存方法。式1中、Lは連結基を表す。Xは、-CR1=CR2R3又は-CHR1-CR2R3Yで表される基を表す。R1、R2及びR3は、独立して、水素原子、アルキル基、及びアリール基からなる群より選ばれる原子若しくは基を表す。Yは、ハロゲン原子、-OSO2R11、-OCOR12、-OSO3M、及び四級ピリジニウム基からなる群より選ばれる原子若しくは基を表す。R11は、アルキル基又はアリール基を表す。R12は、アルキル基を表す。Mは、水素原子、アルカリ金属原子及びアンモニウム基からなる群より選ばれる原子若しくは基を表す。前記反応性基A1が固定化された支持体が、表面にアミノ基を有する支持体に対し、式2:X-SO2-L-SO2-Xで表されるジスルホン化合物を接触させることにより、前記式1で表される基を導入したものである、請求項5に記載の核酸アレイの保存方法。式2中、Lは連結基を表す。Xは、独立して-CR1=CR2R3又は-CHR1-CR2R3Yで表される基を表す。R1、R2及びR3は、独立して、水素原子、アルキル基、及びアリール基からなる群より選ばれる原子若しくは基を表す。Yは、ハロゲン原子、-OSO2R11、-OCOR12、-OSO3M、及び四級ピリジニウム基からなる群より選ばれる原子若しくは基を表す。R11は、アルキル基又はアリール基を表す。R12は、アルキル基を表す。Mは、水素原子、アルカリ金属原子、及びアンモニウム基からなる群より選ばれる原子若しくは基を表す。前記保存ケースがスライドケースである、請求項1~6のいずれか1項に記載の核酸アレイの保存方法。核酸が共有結合により支持体に固定化された核酸アレイを保存した、ポリプロピレン製の保存ケースを、収容し、密封した包装体。前記包装体内が真空である、又は包装体内に不活性ガスを充填した、請求項8に記載の包装体。前記不活性ガスが、相対湿度が10以下の不活性ガスである、請求項9に記載の包装体。前記包装体内に、乾燥剤をさらに収容した請求項8~10のいずれか一項に記載の包装体。近年、核酸アレイがより広く用いられてきたことに伴い、より過酷な環境下や長い期間の保存を行う状況が生じてきた。そして更に少量の検体核酸による高感度な検出や、より多くの種類の核酸を1つのアレイ上に配することによる検査の効率化等のため、核酸アレイを更に高感度化していくと、ブロッキングでは低減しきれないバックグラウンドノイズが、核酸アレイの保存環境に依存して生じることを見出した。本願発明者は、前記バックグラウンドノイズが、保存ケースの材質により影響を受けることを見出した。上記課題は下記の手段により達成された。1核酸が共有結合により支持体に固定化された核酸アレイを、ポリプロピレン製の保存ケースに保存する、核酸アレイの保存方法。2前記核酸アレイを、真空にて、又は相対湿度が10以下に保持された雰囲気下で保存する、1に記載の核酸アレイの保存方法。3前記核酸アレイを、乾燥剤と共に保存する、1又は2に記載の核酸アレイの保存方法。4前記雰囲気が、不活性ガス雰囲気である2又は3に記載の核酸アレイの保存方法。5前記核酸アレイが、反応性基A1が固定化された支持体に対し、核酸を接触させ、該核酸を該支持体に固定化させたものであり、該反応性基A1が、式1:-L-SO2-Xで表される基である、1~4のいずれか1項に記載の核酸アレイの保存方法。式1中、Lは連結基を表す。Xは、-CR1=CR2R3又は-CHR1-CR2R3Yで表される基を表す。R1、R2及びR3は、独立して、水素原子、アルキル基、及びアリール基からなる群より選ばれる原子若しくは基を表す。Yは、ハロゲン原子、-OSO2R11、-OCOR12、-OSO3M、及び四級ピリジニウム基からなる群より選ばれる原子若しくは基を表す。R11は、アルキル基又はアリール基を表す。R12は、アルキル基を表す。Mは、水素原子、アルカリ金属原子及びアンモニウム基からなる群より選ばれる原子若しくは基を表す。6前記反応性基A1が固定化された支持体が、表面にアミノ基を有する支持体に対し、式2:X-SO2-L-SO2-Xで表されるジスルホン化合物を接触させることにより、前記式1で表される基を導入したものである、5に記載の核酸アレイの保存方法。式2中、Lは連結基を表す。Xは、独立して-CR1=CR2R3又は-CHR1-CR2R3Yで表される基を表す。R1、R2及びR3は、独立して、水素原子、アルキル基、及びアリール基からなる群より選ばれる原子若しくは基を表す。Yは、ハロゲン原子、-OSO2R11、-OCOR12、-OSO3M、及び四級ピリジニウム基からなる群より選ばれる原子若しくは基を表す。R11は、アルキル基又はアリール基を表す。R12は、アルキル基を表す。Mは、水素原子、アルカリ金属原子、及びアンモニウム基からなる群より選ばれる原子若しくは基を表す。7前記保存ケースがスライドケースである、1~6のいずれか1項に記載の核酸アレイの保存方法。8核酸が共有結合により支持体に固定化された核酸アレイを保存した、ポリプロピレン製の保存ケースを、収容し、密封した包装体。9前記包装体内が真空である、又は包装体内に不活性ガスを充填した、8に記載の包装体。10前記不活性ガスが、相対湿度が10以下の不活性ガスである、9に記載の包装体。11前記包装体内に、乾燥剤をさらに収容した8~10のいずれか一項に記載の包装体。本発明により、核酸アレイバックグラウンドノイズの増加を防ぎ、安定して長時間の保存が可能な核酸アレイの保存方法、及び包装体が提供される。バックグラウンドノイズを低減できることにより、より高感度に試料核酸を検知でき、少量の試料から高速かつ正確に検知が可能となる。また、より長期間の保存が可能なため、医療現場や検査機関などにおいて様々な核酸アレイをストックすることが可能となる。本明細書に於ける基原子団の表記に於いて、置換及び無置換を記していない表記は、別記が無い限り置換基を有さないものと共に置換基を有するものをも包含するものである。例えば、アルキル基とは、置換基を有さないアルキル基無置換アルキル基のみならず、置換基を有するアルキル基置換アルキル基をも包含するものである。また、本発明は特許請求の範囲に記載の構成を有するものであるが、以下、その他についても参考のため記載した。核酸アレイは保存環境によっては固定化した核酸が失われることがあったが、これは核酸の分解や剥離によるものと推定されるものであった。核酸が失われた部位では、目的とするハイブリダイゼーションも全く行われないため、検出結果は得られないものの、結果の誤りを誘発することは無かった。一方、バックグラウンドノイズが多い場合は、目的とするハイブリダイゼーションは行われるため、結果の判別を誤るという深刻な問題を生じる。また、支持体の劣化によりバックグラウンドノイズが増加することが問題となっている。これは核酸を支持体に固定化するために用いられる支持体表面の固定化材料の分解又は外来物質の吸着等による変質によりバックグラウンドノイズが増加すると推測される。本発明者は、核酸アレイを保存する際に、ポリプロピレン製の保存容器で保存することにより、核酸アレイのバックグラウンドノイズを抑制し得ることを新たに見出した。さらに、本発明者は、保存環境を低湿に保つことにより、核酸アレイのバックグラウンドノイズをより効果的に抑制し得ることを見出した。本発明の核酸アレイの保存方法及び包装体によれば、このような保存環境によりバックグラウンドノイズが増加することを防ぐことが可能となる。本発明の核酸アレイの保存方法は、核酸が共有結合により支持体に固定化された核酸アレイを、ポリプロピレン製の保存ケースに保存する方法である。更に、本発明の核酸アレイの保存方法は、核酸が共有結合により支持体に固定化された核酸アレイを、相対湿度が10以下に保持された雰囲気下で保存することが好ましい。核酸アレイは、DNAチップ等の核酸マイクロアレイであることが好ましい。支持体核酸アレイは一般的に核酸が固定化されている支持体を有する。支持体としては、核酸アレイに用いられているか、あるいは核酸アレイの製造用の各種の支持体を利用することができる。支持体を構成する支持体材料は、疎水性又は親水性の低い、表面が平滑なものが好ましい。また、その表面が凹凸を有する平面性の低い基板も用いることができる。基板材料としては、ガラス、シリコン、セラミックス、金属等の無機基板材料、ポリエチレンテレフタレート、酢酸セルロース、ポリカーボネート、ポリスチレン、ポリメチルメタクリレート等の有機基板材料であってもよい。また、多孔質であってもよく、織編物、不織布、紙、短繊維成型物等であってもよい。また、これらの複数を積層した構造であってもよい。電気化学的な分析方法に用いる核酸アレイの基板として用いられる電極基板であってもよい。また、表面プラズモン共鳴SPRバイオセンサ用基板、電荷結合素子CCDなどの各種の機能性基板であってもよい。これらの基板材料のうち、表面処理の容易さや、電気化学的方法による解析の容易さから、ガラス又はシリコンが好ましく、ケイ酸ガラスがより好ましい。基板材料の厚さは、100~2000μmの範囲にあることが好ましい。基板材料は通常板型である。基板は、前記基板材料をそのまま用いることもできるが、シランカップリング剤による処理やコーティング、或いはこれらの両方を施して基板とすることが好ましい。特に、ガラスなどの無機基板材料を用いる場合はシランカップリング剤で処理したものが好ましい。シランカップリング剤及びコーティング剤シランカップリング剤及びコーティング剤としては通常ガラスの表面処理に用いられるものを使用可能であるが、後述する核酸との共有結合を可能とする反応性基A1の導入の観点から、核酸又は後述する二官能性反応性化合物と反応することができる反応性基A2を導入可能なものが好ましい。該反応性基A2としては、メルカプト基、アミノ基、アルデヒド基、エポキシ基、カルボキシル基、水酸基等が挙げられ、アミノ基が好ましい。該反応性基A2を導入するには、該反応性基A2を側鎖末端に有する樹脂による被覆、該反応性基A2を有する表面処理剤とシランカップリング剤との両方による表面処理、或いは該反応性基A2を有するシランカップリング剤による表面処理を行うことが好ましい。シランカップリング剤は支持体表面に共有結合によって固定されるため、反応性基A2を支持体表面に強固に固定でき、好ましい。アミノ基を有するシランカップリング剤としては、γ-アミノプロピルトリエトキシシラン、N-βアミノエチル-γ-アミノプロピルトリメトキシシランあるいはN-βアミノエチル-γ-アミノプロピルメチルジメトキシシランを用いることが好ましく、γ-アミノプロピルトリエトキシシランを用いることが特に好ましい。通常の核酸アレイの表面には、予め核酸を固定化するための多数のスポット区画が設定されており、各スポット区画毎に、核酸又は後述する二官能性反応性化合物と反応することができる反応性基A2上記のアミノ基等が予め導入されている。用いる支持体の各領域の表面のそれぞれには、上記のアミノ基、メルカプト基、あるいはヒドロキシル基などの反応性基A2が備えられているが、そのような反応性基を持たない支持体材料には、前述のように、シランカップリング剤による表面処理、あるいはアミノ基などの反応性基A2を側鎖に有するポリマーなどを支持体の表面に塗布被覆する方法を利用して、反応性基A2の導入が行なわれる。上記のような表面処理が予め施された支持体としては、PLLシグマ社、ポリ-L-リジンコート、CMT-GAPSコーニング社、アミノシランコート、MAS松浪ガラス株式会社、アミノシランコート、シラネイトグライナー社、ポリシランコート、シラネイトテレケム、ポリシランコート、DNA-ReadyType1又は2スライドクローンテック社、アミノシランコート、シリレイトグライナー社、シランアルデヒドコート、シリレイトテレケム社、シランアルデヒドコート、3D-Linkサーモテックス社、活性化カルボン酸処理等の市販品を用いることもできる。核酸と共有結合可能な反応性基A1本発明の核酸アレイは、支持体に固定化されている、核酸と共有結合可能な反応性基A1に、核酸を接触させることで、前記支持体に核酸が共有結合を介して固定したものであることが好ましい。反応性基A1は好ましくは、式1:-L-SO2-Xで表される基である。式中、Lは連結基を表す。Xは、-CR1=CR2R3又は-CHR1-CR2R3Yで表される基を表す。R1、R2及びR3は、独立して、水素原子、アルキル基、及びアリール基からなる群より選ばれる原子若しくは基を表す。Yは、ハロゲン原子、-OSO2R11、-OCOR12、-OSO3M、及び四級ピリジニウム基からなる群より選ばれる原子若しくは基を表す。R11は、アルキル基又はアリール基を表す。R12は、アルキル基を表す。Mは、水素原子、アルカリ金属原子、及びアンモニウム基からなる群より選ばれる原子若しくは基を表す。アルキル基としては、置換基を有していてもよく、炭素数1~6のものが好ましく、直鎖型でも分岐型でもよく、例えばメチル基、エチル基、n-プロピル基、n-ブチル基、及びn-ヘキシル基を挙げることができ、メチル基であることが特に好ましい。アリール基としては、置換基を有していてもよく、フェニル基及びナフチル基を挙げることができる。これらの基が更に有していてもよい置換基としては、例えばハロゲン原子、水酸基、アルキル基、シクロアルキル基、アリール基、1~6のアルコキシ基、アルケニル基、2~7のカルバモイル基、スルファモイル基若しくはそのNa塩、K塩等、スルホ基若しくはそのNa塩、K塩等、カルボン酸基若しくはそのNa塩、K塩等、スルホニル基、及びこれらの組み合わせ等が挙げられ、これら更なる置換基を有する基としては、炭素原子数が1~6のハロゲン化アルキル基、炭素原子数が1~6のアルキル鎖を有する合計炭素原子数が7~26のアラルキル基等が挙げられる。R1、R2及びR3は共に水素原子であることが好ましい。Lは、支持体若しくは支持体に結合している反応性基A2と、上記-SO2-X基とを連結している二価若しくはそれ以上の連結基を表わす。ただし、Lは単結合であってもよい。二価の連結基としては、炭素原子数が1~6のアルキレン基、炭素原子数が3~16の脂肪族環基、炭素原子数が6~20のアリーレン基、N、S及びPからなる群より選ばれるヘテロ原子を1~3個含む炭素原子数が2~20の複素環基、-O-、-S-、-SO-、-SO2-、-SO3-、-NR11-、-CO-及びこれらの組み合わせから群より選ばれる基を一つあるいは複数個組み合わせてなる基であることが好ましい。R11は、水素原子、炭素原子数が1~15のアルキル基、炭素原子数が6~20のアリール基、あるいは炭素原子数が1~6のアルキル基を有する炭素原子数が7~21のアラルキル基であることが好ましく、水素原子若しくは炭素原子数が1~6のアルキル基であることが更に好ましく、水素原子、メチル基若しくはエチル基であることが特に好ましい。Lが-NR11-、-SONR11-、-CONR11-、-NR11COO-、及び-NR11CONR11-からなる群より選ばれる基を二個以上組み合わせてなる基である場合には、それらのR11同士が結合して環を形成していてもよい。Lとしては、炭素数3~15の有機基であることがより好ましく、-CONR11-で表される基を有することが好ましい。式1で表される基を有する支持体は、例えば、上記のアミノ基等の反応性基A2を導入した支持体を用意し、この支持体と、この担体表面に備えられた反応性基A2と反応して共有結合を形成する反応性基A3を一方の端部若しくは端部附近に有し、かつ他方の端部若しくは端部附近に式1で表される反応性基A1又はその前駆体を有する化合物とを接触させることにより製造することができる。ここで、反応性基A3は反応性基A2の種類によって適宜選択されるが、反応性基A1と同様な基が好ましい。上記-X基の好ましい具体例を以下に示す。また、-L-SO2-Xとして使用できる基の例についても、その後に示す。具体例中、Rは前記R11と同義である。X’はハロゲン原子を表す。-Xは、上記具体例中、X1、X2、X3、X4、X7、X8、X13あるいはX14であることが好ましく、X1あるいはX2であることが更に好ましい。特に好ましいのは、X1で表わされるビニル基である。Lの好ましい具体例を以下に示す。但し、aは、1~6の整数であり、1若しくは2であることが好ましく、1であることが特に好ましい。bは、0~6の整数であり、2若しくは3であることが好ましい。R11は前記と同義である。Lとしては、上記記載の二価の連結基の他に、上記式のアルキレン基の水素原子が-SO2CH=CH2基によって置換されてなる基も好ましい。反応性基A1と核酸とを共有結合させる固定化反応は通常の方法で行えるが、水性雰囲気で行うことが好ましい。前記式1で表される反応性基A1を支持体に固定化する際は、表面にアミノ基を有する支持体に対し、式2:X-SO2-L-SO2-Xで表されるジスルホン化合物を接触させることが好ましい。X、Lは各々前記式1と同義である。2つのXは互いに同じでも異なっていてもよい。本発明で好ましく用いるジスルホン化合物の代表例を下記に示す。なお、ジスルホン化合物は、二種類以上を混合して用いてもよい。ジスルホン化合物の代表的な例としては、1,2-ビスビニルスルホニルアセトアミドエタン[上記のS1に相当する]を挙げることができる。本発明で用いるジスルホン化合物の合成法については、たとえば、特公昭47-2429号、同50-35807号、特開昭49-24435号、同53-41551号、同59-18944号等の各種公報に詳細が記載されている。核酸上記のようにして得られた核酸アレイに核酸等を固定するためには、上記の核酸アレイを、その担体表面上のビニルスルホニル基若しくはその反応性前駆体基と反応して共有結合を形成する、アミノ基などの反応性基A4を備えたヌクレオチド誘導体若しくはその類縁体プローブ分子と接触させる方法が利用される。上記固相支持体表面に共有結合を介して結合されたビニルスルホニル基若しくはその反応性前駆体基は、加水分解に対して高い抵抗性を有しているため、容易に安定に保存することができ、また、アミノ基を予め備えているか、あるいはアミノ基などの反応性基A4が導入されているかヌクレオチド誘導体若しくはその類縁体の反応性基A4と迅速に反応して、安定な共有結合を形成することができる。プローブ分子として用いるヌクレオチド誘導体若しくはその類縁体の代表例としては、オリゴヌクレオチド、ポリヌクレオチド、そしてペプチド核酸を挙げることができる。これらのヌクレオチド誘導体若しくはその類縁体としては、天然起源のものDNA、DNA断片、RNA、あるいはRNA断片などであってもよく、あるいは合成化合物であってもよい。また、ヌクレオチド誘導体若しくはその類縁体としては、その糖単位部分に架橋基を有するLNAと呼ばれる化合物J.Am.Chem.Soc.1998,120,13252-13253に記載などの各種の類縁化合物が含まれる。プローブ分子としてDNA断片を用いる場合は、目的によって二通りに分けることができる。遺伝子の発現を調べるためには、cDNA、cDNAの一部、EST等のポリヌクレオチドを使用することが好ましい。DNA断片は、2~50量体であることが好ましく、10~25量体であることが特に好ましい。オリゴヌクレオチドやDNA断片などのヌクレオチド誘導体若しくはその類縁体の一方の末端には、前記のビニルスルホニル基若しくはその反応性前駆体基と反応して共有結合を形成する反応性基A4を導入することが好ましい。このような反応性基A4は、アミノ基、イミノ基、ヒドラジノ基、カルバモイル基、ヒドラジノカルボニル基、若しくはカルボキシイミド基であることが好ましく、アミノ基であることが特に好ましい。オリゴヌクレオチドやDNA断片には、通常、クロスリンカーを介してこれらの反応性基A4が結合される。クロスリンカーとしては、たとえば、アルキレン基あるいはN-アルキルアミノ-アルキレン基が利用されるが、ヘキシレン基あるいはN-メチルアミノ-ヘキシレン基であることが好ましく、ヘキシレン基であることが特に好ましい。なお、ペプチド核酸PNAはアミノ基を有しているため、通常は、改めて別に反応性基A4を導入する必要はない。反応性基A4を備えたヌクレオチド誘導体若しくはその類縁体と核酸アレイとの接触は、通常、該ヌクレオチド誘導体若しくはその類縁体の水溶液を核酸アレイの表面に点着することにより実施される。この際、後述する親水性ポリマー等で粘度を増加させて点着することもできる。点着後のヌクレオチド誘導体若しくはその類縁体の乾燥を防ぐために、ヌクレオチド誘導体若しくはその類縁体が溶解あるいは分散してなる水性液中に、高沸点の物質を添加してもよい。高沸点の物質としては、グリセリン、エチレングリコール、ジメチルスルホキシド及び低分子の親水性ポリマーを挙げることができる。親水性ポリマーとしては、ポリアクリルアミド、ポリエチレングリコール、そしてポリアクリル酸ナトリウム等を挙げることができ、分子量103~106のものが好ましい。高沸点の物質としては、グリセリンあるいはエチレングリコールを用いることが更に好ましく、グリセリンを用いることが特に好ましい。高沸点の物質の濃度は、ヌクレオチド誘導体若しくはその類縁体の水性液中、0.1~2容量の範囲にあることが好ましく、0.5~1容量の範囲にあることが特に好ましい。また、同じ目的のために、ヌクレオチド誘導体若しくはその類縁体を点着した後の支持体を、90以上の湿度及び25~50°Cの温度範囲の環境に置くことも好ましい。反応性基A4を有するヌクレオチド誘導体若しくはその類縁体を点着後、紫外線、水素化ホウ素ナトリウムあるいはシッフ試薬による後処理を施してもよい。又、デキストラン硫酸等で支持体表面のアミノ基等の反応性基A2をブロッキングすることも好ましい。これらの後処理は、複数の種類を組み合わせて行ってもよく、特に加熱処理と紫外線処理を組み合わせて行うことが好ましい。これらの後処理は、ポリ陽イオン化合物のみによって支持体表面を処理した場合には特に有効である。点着後は、インキュベーションを行うことも好ましい。インキュベート後は、未反応のヌクレオチド誘導体若しくはその類縁体を洗浄して除去することが好ましい。ヌクレオチド誘導体若しくはその類縁体の固定量数は、支持体表面に対して、102~105種類/cm2の範囲にあることが好ましい。ヌクレオチド誘導体若しくはその類縁体の量は、1~10-15モルの範囲にあり、重量としては数ng以下であることが好ましい。点着によって、ヌクレオチド誘導体若しくはその類縁体の水性液は、支持体表面にドットの形状で固定される。ドットの形状は、ほとんど円形である。形状に変動がないことは、遺伝子発現の定量的解析や一塩基変異を解析するために重要である。それぞれのドット間の距離は、0~1.5mmの範囲にあることが好ましく、100~300μmの範囲にあることが特に好ましい。1つのドットの大きさは、直径が50~300μmの範囲にあることが好ましい。支持体表面に点着するヌクレオチド誘導体若しくはその類縁体の量は、100pL~1μLの範囲にあることが好ましく、1~100nLの範囲にあることが特に好ましい。上記核酸と共有結合可能な反応性基A1が固定化された、又は、核酸が共有結合により固定化された核酸アレイは、例えば特開2001-228152号公報、特開2002-122610号公報、特開2002-176977号公報当に記載の方法で得ることができる。保存方法及び包装体本発明の核酸アレイの保存方法は、核酸が共有結合により支持体に固定化された核酸アレイを、ポリプロピレン製の保存ケースに保存する方法である。該核酸アレイをポリプロピレン製の保存容器で保存することにより、核酸アレイのバックグラウンドノイズを抑制し得るという効果を奏する。このような効果が得られる理由は定かではないが、以下のように推測している。ポリプロピレン以外の樹脂製例えば、アクリロニトリルAcrylonitrile-ブタジエンButadiene-スチレンStyrene共重合体ABS樹脂等の保存容器に核酸アレイを保存した場合、経時によりバックグラウンドノイズが増加してしまう。ABS樹脂からは可塑剤と想定される化学物質が発散されることを確認しており、その化学物質の吸着等により、支持体表面が変質し、バックグラウンドノイズとして検出されると推測される。一方、ポリプロピレンはその製造において可塑剤を用いないことが一般的に知られており、化学物質の発散は確認されていない。ポリプロピレン製の保存ケースは、袋状であっても箱状であってもその形状は特に制限されないが、核酸アレイを物理的に保護するため、スライドケース等の硬質なケースであることが好ましい。以上より、保存ケースに用いる樹脂は以下の2点の特徴を有していることが必要である。1可塑剤を用いていないこと。2ある程度の強度を有していること。ポリプロピレン以外で上記2点を満たしている樹脂はあまり知られていない。例えば、PSポリスチレンは可塑剤を使用しており、また、強度的にも問題がある。PCポリカーボネートは強度的には問題がないが可塑剤を使用している。可塑剤を使用していない樹脂としてはPEポリエチレンも知られているが、強度的には不十分である。以上より核酸マイクロアレイの保存容器としてはポリプロピレン製のものが最も望ましいといえる。核酸アレイは、真空にて、又は相対湿度が10以下に保持された雰囲気下で保存することが好ましい。雰囲気が、不活性ガス雰囲気であることが好ましい。ここで、相対湿度が10以下に保持された雰囲気下での保持は、保存中の大部分の時間を相対湿度が10以下とすることを指し、具体的には密封1日後から開封時までを指す。本発明は、この密封1日後から開封時までの90以上の時間、好ましくは密封1日後から開封時迄の間の湿度が10RH以下であることが好ましい。上記湿度を保持するため、核酸アレイは乾燥剤と共に保存することが好ましい。核酸が共有結合により支持体に固定化された核酸アレイを保存したポリプロピレン製の保存ケースは、湿度を透過しにくい包装材で包装することが好ましい。本発明の包装体は、核酸が共有結合により支持体に固定化された核酸アレイを保存した、ポリプロピレン製の保存ケースを、収容し、密封した包装体である。本発明の包装体は、真空である、又は包装体内に不活性ガスを充填することが好ましい。また、該包装体内が相対湿度が10以下の雰囲気であることが好ましい。包装体内は真空である、又は包装体内に不活性ガスを充填することが好ましい。不活性ガスは、相対湿度が10以下の不活性ガスであることがより好ましい。不活性ガスとしては、例えば、窒素ガス、ヘリウムガス、アルゴンガス等の不活性ガスを挙げることができる。また、該包装体内の相対湿度が10以下の雰囲気とするために、包装体内には、乾燥剤をさらに収容することが好ましい。包装体の形状は、シート状の包装材を袋状一枚のシートを折り曲げた後三辺をシールしたものや、二枚重ねした後四辺をシールしたものなどにしたものや、ブリスターパックなどが挙げられる。包装材としては、PEポリエチレン、PETポリエチレンテレフタレート、PVDCポリ塩化ビニリデン、EVOHエチレン-ビニルアルコール共重合体、アドマー粘着性ポリオレフィン樹脂、Alアルミニウムなどが挙げられ、またこれらを積層したものであっても良い。包装材の厚さは、特に限定しないが、0.05~0.15mm程度が好ましい。さらに、包装材は、水蒸気バリア性フィルム等が好適に使用できる。水蒸気バリアー性に優れた層を含むことにより、核酸アレイの保存性の向上を図ることができる。例えば水蒸気透過度が1g/m224時間以下のものが好ましい。密閉性を確保するために、軟質又は薄い、湿度を透過しにくい包装材と、物理的強度を確保するために硬質なポリフロピレン製の保存ケースの両方を用いることがより好ましい。両方を用いる場合、硬質なポリフロピレン製の保存ケースに核酸アレイを保存した上で、全体を包装材で包装した包装体とすることがより好ましい。乾燥剤は、市販の各種乾燥剤を使用することができ、塩化カルシウム、五酸化二リン、硫酸ナトリウム無水塩、過塩素酸マグネシウム等の化学乾燥剤、シリカゲル、ゼオライト等の多孔質乾燥剤を用いたものが使用できる。包装体内は、200Pa以下、より好ましくは10Pa以下の真空とすることが好ましい。また、保存は、30°C以下で行われることが好ましく、より好ましくは20°C以下、更に好ましくは8°C以下で行われる。使用方法ハイブリダイゼーション拡散アレイは、遺伝子発現のモニタリング、塩基配列の決定、変異解析、多型解析等に利用される。検出原理は、標識した試料核酸断片とのハイブリダイゼーションである。標識方法としては、RI法と非RI法蛍光法、ビオチン法、化学発光法等とが知られているが、本発明では蛍光法を用いることが好ましい。蛍光標識に利用される蛍光物質としては、核酸の塩基部分と結合できるものであれば何れも用いることができるが、シアニン色素例えば、市販のCyDyeTMシリーズのCy3、Cy5等、ローダミン6G試薬、N-アセトキシ-N2-アセチルアミノフルオレンAAFあるいはAAIFAAFのヨウ素誘導体を使用することができる。試料核酸断片としては、通常、その配列や機能が未知であるDNA断片試料あるいはRNA断片試料などの核酸断片試料が用いられる。核酸断片試料は、遺伝子発現を調べる目的では、真核生物の細胞や組織サンプルから単離することが好ましい。試料がゲノムならば、赤血球を除く任意の組織サンプルから単離することが好ましい。赤血球を除く任意の組織は、抹消血液リンパ球、皮膚、毛髪、精液等であることが好ましい。試料がmRNAならば、mRNAが発現される組織サンプルから抽出することが好ましい。mRNAは、逆転写反応により標識dNTPdNTPは、塩基がアデニンA、シトシンC、グアニンG若しくはチミンTであるデオキシリボヌクレオチドを意味する。を取り込ませて標識cDNAとすることが好ましい。dNTPとしては、化学的な安定性のため、dCTPを用いることが好ましい。一回のハイブリダイゼーションに必要なmRNA量は、点着する液量や標識方法によって異なるが、数μg以下である。なお、ヌクレオチド誘導体若しくはその類縁体固定固相担体上のDNA断片がオリゴDNAである場合には、核酸断片試料は低分子化しておくことが望ましい。原核生物の細胞では、mRNAの選択的な抽出が困難なため、全RNAを標識することが好ましい。核酸断片試料は、遺伝子の変異や多型を調べる目的では、標識プライマー若しくは標識dNTPを含む反応系において標的領域のPCRを行なって得ることが好ましい。ハイブリダイゼーションは、分注しておいた標識した核酸断片試料が溶解あるいは分散してなる水性液を、本発明のヌクレオチド誘導体若しくはその類縁体を固定した固相担体上に点着することによって実施することが好ましい。点着の量は、1~100μLの範囲にあることが好ましい。ハイブリダイゼーションは、室温~70°Cの温度範囲で、そして6~70時間の範囲で実施することが好ましい。ハイブリダイゼーションの終了後、界面活性剤と緩衝液との混合溶液を用いて洗浄を行い、未反応の核酸断片試料を除去することが好ましい。界面活性剤としては、ドデシル硫酸ナトリウムSDSを用いることが好ましい。緩衝液としては、クエン酸緩衝液、リン酸緩衝液、ホウ酸緩衝液、トリス緩衝液、グッド緩衝液等を用いることができるが、クエン酸緩衝液を用いることが特に好ましい。核酸アレイを用いたハイブリダイゼーションにより、標識した核酸断片試料の使用量を非常に少なくできることである。遺伝子発現の解析には、低発現の遺伝子も十分に検出できるように、長時間のハイブリダイゼーションを行うことが好ましい。一塩基変異の検出には、短時間のハイブリダイゼーションを行うことが好ましい。また、互いに異なる蛍光物質によって標識した核酸断片試料を二種類用意し、これらを同時にハイブリダイゼーションに用いることにより、同一のDNA断片固定固相担体上で発現量の比較や定量ができる特徴もある。なお、特開2010-004873に記載のハイブリダイゼーションを行うことも好ましい。以下に実施例を挙げて、本発明をより詳細に説明する。本発明は下記の実施例に限定されるものではない。核酸アレイの長期保存によるバックグラウンドシグナル上昇の評価は、高温環境下に一定期間、その対象物を置き、その経時的バックグラウンドシグナル上昇を調べることにより実施した。実施例11核酸マイクロアレイの製造核酸マイクロアレイは、BACクローンRPCI,RP11BACライブラリから調製したプローブDNA712種をそれぞれ3つずつガラス基板上にスポットした、合計2136個のスポットを有しているものを用いた。まず、BACクローンを大量培養後、イオン交換カラムQIAGEN社、PlasmidMidiKit100Cat.No.12145を用いて抽出精製しBACDNAを得た。その後、BACDNAを4塩基認識酵素、RsaI、DpnI、HaeIIIで消化した後、アダプターを加えてライゲーションをおこなう。次に、アダプターの一方のオリゴヌクレオチドと同一配列を有するプライマーを用いて、PCR法により増幅することによりプローブDNAが得られる。プローブDNAの長さは1000~3000bp程度である。プローブDNAの基板へのスポットはGENESHOT日本ガイシ株式会社、名古屋を使用した。支持体はガラス基板松浪ガラス製社、VSCコートガラスを使用した。VSCコートガラスは、ガラス表面に対してシランカップリング剤を用いてアミノ基を導入し、そのアミノ基に対してジスルホン化合物下記化合物A:富士フイルム社製を接触させて作成したガラス基板である。2保存得られた核酸マイクロアレイを、スライドケースポリプロピレン製の保存ケースに入れ、65°Cで、1日間保存した。スライドケースはポリプロピレン製のケースサーモフィッシャーサイエンティフィック社、プラスチックスライドメイラーPP製保存ケースを使用した。実施例2包装体の製造及び保存上記実施例1で得られた核酸マイクロアレイを、上記実施例1と同様のスライドケースPP製保存ケースに入れ、更に乾燥剤を入れた状態のスライドケースを水分の透過を抑えた包装体に開口部より挿入した。そして開口部を熱圧着により接着して密閉し、包装体を製造した。包装体は、水蒸気透過度がほぼ0g/m224時間である水蒸気バリア性フィルムを用いて袋状に形成した。水蒸気バリア性フィルムとしては、包装体として形成されたときに最も内側に位置する第1層が低密度ポリエチレン、第2層がポリエチレン、第3層がアルミニウム箔、第4層がポリエチレン、第5層がポリエチレンテレフタレートからなる複合フィルムを使用した。乾燥剤はパルプシートに塩化カルシウムを染み込ませた板状の乾燥剤アイディ社、アイディシートを使用した。乾燥剤は、包装体内容積から計算した必要量より過剰量を包装体内に封入した。得られた包装体を、65°Cで、1日間保存した。比較例1比較用包装体比較用核酸マイクロアレイ実施例2で使用したスライドケースであるPP製保存ケースの代わりにABS製保存ケース松浪硝子工業株式会社製を用いた以外は実施例2と同様にして比較用包装体の製造及び保存を行った。試験例1実施例1の1で製造した、保存前の核酸マイクロアレイのバックグラウンドシグナルを、非共焦点方式のGenePixR4000BAxonInstrumentsを用いて測定した。測定はPMTGainを最大に設定して実施した。測定はスポット径の3倍の範囲について実施した。各スポットについて測定を実施し、その平均値を測定値A初期値とした。次に、実施例1の2及び実施例2で保存した後の核酸マイクロアレイ、及び比較例1で保存した後の比較用核酸マイクロアレイのバックグラウンドシグナルを、上記と同様に測定し、その平均値を測定値Bとした。そして、測定値B/測定値Aを初期値比として算出し、初期値比の平均値を初期値比Ave.として表1に記載した。また、比較例1及び実施例2初期値比の平均値の標準偏差を求め、初期値比SDとして表1に記載した。実施例2でPP製保存ケースに保存した核酸マイクロアレイ、及び比較例1でABS製保存ケースに保存した比較用核酸マイクロアレイの初期値比を図7に示す。図7より、ABS製の保存ケースに保存した場合の初期値比は、2.0~11.0と大きく、バックグラウンドシグナルが増加していることがわかる。一方、PP製の保存ケースに保存した本発明の核酸マイクロアレイの初期値比は、1.1~1.5と小さく、保存性が良いことがわかる。実施例3実施例1で得られた核酸マイクロアレイを、実施例1と同様のスライドケースPP製保存ケースに入れ、乾燥剤を用いないこと以外は実施例2と同様にして包装体を製造した。比較例2乾燥剤を用いないこと以外は比較例1と同様にして比較用包装体の製造及び保存を行った。試験例2実施例3および比較例2で保存した各核酸マイクロアレイのバックグラウンドシグナルを試験例1と同様に測定し、初期値比の平均値Ave.を算出した。実施例4実施例2及び3で得られた包装体を、下表に示した各温度条件A~Cで6日間保存した。保存条件A~Cそれぞれにおいて乾燥剤を封入した場合実施例2及び乾燥剤を封入しなかった場合実施例3の包装体内の湿度の測定値を図1~図6に示す。図より乾燥剤を封入した場合の包装体内の湿度は6日間の間10以下に保持されていることが分かる。試験例3次に実施例2及び3で保存した各核酸マイクロアレイのバックグラウンドシグナルを、試験例1と同様に測定した。各核酸マイクロアレイの保存前の測定値に対する保存後の測定値の上昇率を下表に記載した。乾燥剤を封入して保存した核酸マイクロアレイでは、乾燥剤を封入しなかった場合と比べてバックグラウンドシグナルの上昇率は著しく低下した。以上の結果は、本実施例の保存方法によればバックグラウンドシグナルの上昇率を著しく低下させることが可能であることを示している。"