1つまたは複数の脂質を含む膜により媒体から分離された内部空間を有するリポソームを媒体中に含む組成物であって、該リポソームの内部空間が以下の式を有する置換アンモニウムを含み、R1NR4式中、Nはアンモニウム窒素原子であり、R1、R2、R3、R4はそれぞれ、独立して水素原子、またはそれぞれ独立して8個以下の炭素原子を有し、全体として18個以下の炭素原子を包括的に有する有機基であって、R1、R2、R3、R4の少なくとも1つは有機基であり;有機基は独立して、エーテル、エステル、チオエーテル、アミン、またはアミド結合を形成するS、O、またはN原子を任意で含む、アルキル基、アルキリデンalkylidene基、複素環アルキル基、シクロアルキル基、アリール基、アルケニル基、シクロアルケニル基、またはそれらのヒドロキシ置換誘導体であり;ならびにR1、R2、R3、R4の少なくとも3つは有機基であるか;または有機基の少なくとも1つは、アンモニウム窒素原子に直接結合している第二級もしくは第三級炭素原子を有し;かつ該内部空間がアニオンも含む、組成物。有機基が独立してそれぞれ6個以下の炭素原子を有する、請求項1記載の組成物。有機基が全体として16個以下の炭素原子を有する、請求項1記載の組成物。有機基が全体として12個以下の炭素原子を有する、請求項1記載の組成物。置換アンモニウムが水中で真溶液truesolutionを形成する、請求項1記載の組成物。実質的にすべての置換アンモニウムがリポソームの内部空間内に含まれている、請求項1記載の組成物。置換アンモニウムが薬学的に不活性である、請求項1記載の組成物。置換アンモニウムが、イソプロピルエチルアンモニウム、イソプロピルメチルアンモニウム、ジイソプロピルアンモニウム、tertブチルエチルアンモニウム、ジシクロヘキシルアンモニウム、モルフォリニウム、ピリジニウム、ピペリジニウム、ピロリジニウム、ピペラジニウム、tertブチルアンモニウム、2アンモニオ2メチルプロパノール1、2アンモニオ2メチルプロパンジオール13、トリスアンモニオメタン、NNジエチルエタノールアンモニウム、NNNトリスアンモニウム、NNビスエチルアンモニウム、トリメチルアンモニウム、トリエチルアンモニウム、ジエチルメチルアンモニウム、ジイソプロピルエチルアンモニウム、トリイソプロピルアンモニウム、Nメチルモルフォリニウム、1ピペリジニウム、1メチルピロリジニウム、14ジメチルピペラジニウム、テトラメチルアンモニウム、テトラエチルアンモニウム、およびテトラブチルアンモニウムからなる群より選択される、請求項1記載の組成物。リポソームの内部空間内の置換アンモニウムの濃度が、リポソーム含有媒体中の置換アンモニウム濃度よりも高い、請求項1記載の組成物。内部空間内の置換アンモニウムの濃度が、少なくとも約005M、01M、02M、05M、06M、または07Mの濃度である、請求項1記載の組成物。内部空間内の置換アンモニウムの濃度が約065Mである、請求項1記載の組成物。アニオンが、二価アニオン、三価アニオン、多価アニオン、高分子アニオン、ポリアニオン化polyanionizedポリオール、またはポリアニオン化糖である、請求項1記載の組成物。1つまたは複数の脂質を含む膜により媒体から分離された内部空間を有するリポソームを媒体中に含む組成物であって、該内部空間がポリアニオン化ポリオールまたはポリアニオン化糖からなる群より選択されるアニオンを含み、かつ該リポソームが該リポソーム内の物質保持に有効な膜間勾配を含む組成物。膜間勾配が、イオン勾配、アンモニウムイオン勾配、pH勾配、電気化学ポテンシャル勾配、溶解度勾配、または少なくとも1つのCN結合を含む置換アンモニウムの勾配である、請求項13記載の組成物。アニオンが、単糖、二糖、線状ポリヒドロキシル化化合物、環状ポリヒドロキシル化化合物、2つ以上のヒドロキシル基を有する脂肪族アルコール、2つ以上のヒドロキシル基を有する脂環式アルコール、または2つ以上のヒドロキシル基を有する複素環アルコールからなる群より選択されるポリオール部分、および該ポリオール部分に結合した、少なくとも2つの強力なアニオン性機能基を含む、請求項1~14のいずれか一項記載の組成物。強力なアニオン性機能基の少なくとも1つが、硫酸エステル、リン酸エステル、ホウ酸エステル、スルホン酸基、ホスホン酸基、チオ炭酸基、ジチオ炭酸基、それらの誘導体、またはそれらの類似体である、請求項15記載の組成物。ポリオール部分が、アラビノース、リボース、キシロース、グルコース、ガラクトース、ソルボース、フルクトース、マルトース、スクロース、ラクトース、トレハロース、エチレングリコール、プロリレングリコール、グリセロール、トレイトールtreitol、エリスリトール、ペンタエリスリトール、リビトール、アラビトール、ソルビトール、マンニトール、ラクチトールlactitol、マルチトール、フルクチトールfructitol、グルシトール、キシリトール、またはイノシトールからなる群より選択される、請求項15記載の組成物。ポリアニオンが、1分子当たり3~8個の硫酸基を有するポリ硫酸化スクロースである、請求項15記載の組成物。ポリ硫酸化スクロースがスクロース8硫酸である、請求項15記載の組成物。ポリアニオンがイノシトール6リン酸である、請求項15記載の組成物。リポソーム内部内のアニオンの濃度が、少なくとも約005、01、02、05、06、07、または10グラム当量Lである、請求項15記載の組成物。リポソーム内部内のアニオンの濃度が約065グラム当量Lまたは約10グラム当量Lである、請求項15記載の組成物。置換アンモニウムおよびアニオン以外の物質をさらに含む、請求項1~22のいずれか一項記載の組成物。物質が全体的にカチオン性の物質、治療用物質、または検出マーカーである、請求項23記載の組成物。物質が媒体中の該物質の濃度を超える濃度で内部空間内に存在する、請求項23記載の組成物。媒体が物質を本質的に含まない、請求項23記載の組成物。総脂質に対する物質のモル比が、少なくとも約005、少なくとも約01、少なくとも約02、少なくとも約03、少なくとも約05、少なくとも約07、または少なくとも約10である、請求項23記載の組成物。治療用物質が抗菌治療用物質、抗ウイルス治療用物質、または抗新生物治療用物質である、請求項24記載の組成物。治療用物質がアミノグリコシド系抗生物質またはフルオロキノロン誘導体である、請求項24記載の組成物。治療用物質が、トポイソメラーゼ阻害剤、ファルネシルトランスフェラーゼ阻害剤、チロシンキナーゼ阻害剤、サイクリン依存性キナーゼ阻害剤、ホスファターゼ阻害剤、オーロラauroraキナーゼ阻害剤、微小管脱重合剤、微小管安定化剤、アルキル化剤、酵素、酵素阻害剤、ヒストンデアセチラーゼ阻害剤、代謝拮抗剤、受容体結合剤、ホルモン、ホルモン拮抗剤、ヌクレオチド、ポリヌクレオチド、上記のいずれかの誘導体、上記のいずれかのプロドラッグ、および上記のいずれかの類似体からなる群より選択される、請求項28記載の組成物。抗新生物治療用物質が、アントラサイクリン化合物、カンプトテシン化合物、ビンカアルカロイド、エリプチシン化合物、タキサン化合物、ワートマンニン化合物、ピラゾロピリミジン化合物、上記のいずれかの誘導体、上記のいずれかのプロドラッグ、および上記のいずれかの類似体からなる群より選択される、請求項28記載の組成物。治療用物質が、ドキソルビシン、ダウノルビシン、マイトマイシンC、エピルビシン、ピラルビシン、ルビドマイシン、カルシノマイシン、Nアセチルアドリアマイシン、ルビダゾン、5イミドダウノマイシン、Nアセチルダウノマイシン、ダウノリリン、ミトキサントロン、カンプトテシン、9アミノカンプトテシン、7エチルカンプトテシン、10ヒドロキシカンプトテシン、9ニトロカンプトテシン、1011メチレンジオキシカンプトテシン、9アミノ1011メチレンジオキシカンプトテシン、9クロロ1011メチレンジオキシカンプトテシン、イリノテカン、トポテカン、ラートテカン、シラテカン、1011エチレンジオキシ20カンプトテシン、71011メチレンジオキシ20カンプトテシン、7エチルカンプトテシン、ビンクリスチン、ビンブラスチン、ビノレルビン、ビンフルニン、ビンポセチン、ビンデシン、エリプチシン、63アミノプロピルエリプチシン、2ジエチルアミノエチルエリプチシニウムおよびその塩、ダテリプチウム、レテリプチン、パクリタキセル、ドセタキセル、上記のいずれかの誘導体、上記のいずれかのプロドラッグ、ならびに上記のいずれかの類似体からなる群より選択される、請求項24記載の組成物。治療用物質が、抗ヒスタミンエチレンジアミン誘導体、ブロムフェニファミン、ジフェンヒドラミン、抗原虫薬、キノロン、ヨードキノール、アミジン化合物、ペンタミジン、抗蠕虫化合物、ピランテル、抗住血吸虫薬、オキサムニキン、抗真菌トリアゾール誘導体、フルコナゾール、イトラコナゾール、ケトコナゾール、ミコナゾール、抗菌セファロスポリン、セファゾリン、セフォニシド、セフォタキシム、セフタジミド、セフオキシム、抗菌βラクタム誘導体、アズトレオパム、セフメタゾール、セフォキシチン、エリスロマイシン群の抗菌剤、エリスロマイシン、アジスロマイシン、クラリスロマイシン、オレアンドマイシン、ペニシリン化合物、ベンジルペニシリン、フェノキシメチルペニシリン、クロキサシリン、メチシリン、ナフシリン、オキサシリン、カルベニシリン、テトラサイクリン化合物、ノボビオシン、スペクチノマイシン、バンコマイシン;抗ミコバクテリア薬、アミノサリチル酸、カプレオマイシン、エタンブトール、イソニアジド、ピラジナミド、リファブチン、リファンピン、クロファジミン、抗ウイルスアダマンタン化合物、アマンタジン、リマンタジン、キニジン化合物、キニーネ、キナクリン、クロロキン、ヒドロキシクロロキン、プリマキン、アモジアキン、メフロキン、抗菌キオノロン、シプロフロキサシン、エノキサシン、ロメフロキサシン、ナリジクス酸、ノルフロキサシン、オフロキサシン、スルホンアミド;尿路抗菌剤、ニトロフラントイン、トリメトプリム;ニトロイミダゾール誘導体、メトロニダゾール、コリン作動性第四級アンモニウム化合物、アンベチニウム、ネオスチグミン、フィゾスチグミン、抗アルツハイマーアミノアクリジン、タクリン、抗パーキンソン病薬、ベンズトロピン、ビペリデン、プロシクリジン、トリヘキシルフェニジル、抗ムスカリン剤、アトロピン、ヒヨスチアミン、スコポラミン、プロパンテリン、アドレナリン作動化合物、ドーパミン、セロトニン、アルブテロール、ドブタミン、エフェドリン、エピネフリン、ノルエピネフリン、イソプロテレノール、メタプロペレノール、サルメテロール、テルブタリン、セロトニン再取り込み阻害剤、エルゴタミン誘導体、クラーレ系の筋弛緩剤、中枢作用筋弛緩剤、バクロフェン、シクロベンゼピン、ダントロレン、ニコチン、ニコチン受容体拮抗薬、βアドレナリン遮断薬、アセブチル、アミオダロン、ベンゾジアゼピン化合物、ジルチアゼム、抗不整脈薬、ジソピラミド、エンカイジン、局所麻酔化合物、プロカイン、プロカインアミド、リドカイン、フレカイニド、キニジン;ACE阻害剤、カプトプリル、エナラプリラート、フォシノプリル、キナプリル、ラミプリル;アヘン誘導体、コデイン、メペリジン、メサドン、モルヒネ、抗高脂血症剤、フルバスタチン、ゲムフィブロジル、HMGcoA阻害剤、プラバスタチン、降圧剤、クロニジン、グアナベンズ、プラゾシン、グアネチジン、グラナドリル、ヒドララジン、非冠動脈血管拡張剤、ジピリダモール、アセチルコリンエステラーゼ阻害剤、ピロカルピン、アルカロイド、フィゾスチグミン、ネオスチグミン、上記のいずれかの誘導体、上記のいずれかのプロドラッグ、および上記のいずれかの類似体からなる群より選択される、請求項24記載の組成物。2~8°Cで6ヵ月後に、物質の少なくとも90がリポソーム内に封入されて残存する、請求項24記載の組成物。2~8°Cで2年後に、物質の少なくとも80がリポソーム内に封入されて残存する、請求項24記載の組成物。物質が第1の物質脂質比で組成物のリポソーム内に封入され、哺乳動物の血流中への該組成物の投与の24時間後に、該物質が第2の物質脂質比で該リポソーム内に封入されて残存して、第2の物質脂質比が第1の物質脂質比の50を超える、少なくとも60である、または少なくとも70である、請求項24記載の組成物。物質がビンカアルカロイド、その類似体、またはその誘導体である、請求項36記載の組成物。物質がビノレルビンである、請求項36記載の組成物。哺乳動物がラットである、請求項36記載の組成物。1つまたは複数の脂質、および少なくとも約010の物質脂質モル比でその中に封入された抗新生物治療用物質を含むリポソームを含む組成物であって、該リポソーム組成物が、遊離非リポソーム形態の物質の抗新生物活性よりも少なくとも4倍高いインビボ抗新生物活性を有し、かつ哺乳動物に投与した該リポソーム組成物の毒性が、該哺乳動物に遊離非リポソーム形態で投与した該物質の毒性以下である組成物。哺乳動物に投与したリポソーム組成物の毒性が、該哺乳動物に遊離非リポソーム形態で投与した該物質の毒性よりも少なくとも2倍低いまたは少なくとも3倍低い、請求項40記載の組成物。哺乳動物に投与したリポソーム組成物の毒性が、該哺乳動物に遊離非リポソーム形態で投与した該物質の毒性よりも少なくとも4倍低い、請求項40記載の組成物。物質がプロドラッグである、請求項40記載の組成物。物質がカンプトテシントポイソメラーゼI阻害剤、カンプトテシンプロドラッグ、それらの類似体、またはそれらの誘導体である、請求項40記載の組成物。カンプトテシンプロドラッグがイリノテカンである、請求項44記載の組成物。哺乳動物の血流中に投与した物質が、少なくとも10時間のリポソームからの半放出時間halfreleasetimeを有する、請求項44記載の組成物。哺乳動物の血流中に投与した物質が、少なくとも24時間のリポソームからの半放出時間を有する、請求項44記載の組成物。リポソームが、ポリアニオン化糖およびポリアニオン化ポリオールからなる群より選択されるポリアニオンを含む、請求項44記載の組成物。ポリアニオンがスクロース8硫酸またはイノシトール6リン酸である、請求項48記載の組成物。リポソームが生分解性ポリアニオンポリマーを含む、請求項44記載の組成物。生分解性ポリアニオンポリマーがポリリン酸である、請求項50記載の組成物。リポソームが以下の式を有する置換アンモニウム化合物を含み、R1NR4式中、Nはアンモニウム窒素原子であり、R1、R2、R3、R4はそれぞれ、独立して水素原子、またはそれぞれ独立して8個以下の炭素原子を有し、全体として18個以下の炭素原子を包括的に有する有機基であって、R1、R2、R3、R4の少なくとも1つは有機基であり;有機基は独立して、エーテル、エステル、チオエーテル、アミン、またはアミド結合を形成するS、O、またはN原子を任意で含む、アルキル基、アルキリデン基、複素環アルキル基、シクロアルキル基、アリール基、アルケニル基、シクロアルケニル基、またはそれらのヒドロキシ置換誘導体であり;かつR1、R2、R3、R4の少なくとも3つは有機基であるか;または有機基の少なくとも1つは、アンモニウム窒素原子に直接結合している第二級もしくは第三級炭素原子を有する、請求項44記載の組成物。トポイソメラーゼ阻害剤が少なくとも約030モル薬物mol脂質の濃度で捕捉されている、請求項40~52のいずれか一項記載の組成物。トポイソメラーゼ阻害剤が約040モル薬物モル脂質~約17モル薬物モル脂質の濃度で捕捉されている、請求項40~53のいずれか一項記載の組成物。哺乳動物がマウスである、請求項40~54のいずれか一項記載の組成物。抗腫瘍活性がHT29腫瘍モデルまたはBT474腫瘍モデルにおいてインビボで決定される、請求項40~55のいずれか一項記載の組成物。哺乳動物がラットである請求項46または47記載の組成物。媒体中にリポソームを含む、ビンカアルカロイド薬物を投与するための組成物であって、該リポソームが内部空間、および該媒体から該内部を分離する膜を有し、該膜が1つまたは複数の脂質を含み、該リポソームが第1の薬物脂質比でリポソーム内に捕捉されたビンカアルカロイド薬物を含む組成物であって、哺乳動物の血流中への該組成物の投与の24時間後に、ビンカアルカロイド薬物が該第1の薬物脂質比の約50を超える第2の薬物脂質比でリポソーム内に捕捉されて残存する組成物。第2の薬物脂質比が第1の薬物脂質比の少なくとも約60である、請求項58記載の組成物。第2の薬物脂質比が第1の薬物脂質比の少なくとも約70である、請求項58記載の組成物。第1の薬物脂質モル比が少なくとも005、少なくとも01、または少なくとも02である、請求項58~60のいずれか一項記載の組成物。第1の薬物脂質質量比が少なくとも約005mgmmol、少なくとも約01mgmmol、または少なくとも約03mgmmolである、請求項61記載の組成物。リポソームが、リポソーム内の薬物保持に有効な内部外部膜間イオン勾配を含む、請求項58~62のいずれか一項記載の組成物。内部空間が、高分子ポリアニオン、ポリアニオン化ポリオール、またはポリアニオン化糖からなる群より選択されるポリアニオンを含む、請求項58~63のいずれか一項記載の組成物。内部空間がアンモニウムイオンまたは置換アンモニウムイオンを含む、請求項63または64記載の組成物。置換アンモニウムイオンが第一級アンモニウム、第二級アンモニウム、第三級アンモニウム、または第四級アンモニウムイオンである、請求項65記載の組成物。内部空間が以下の式を有する置換アンモニウムイオンを含み、R1NR4式中、Nはアンモニウム窒素原子であり、R1、R2、R3、R4はそれぞれ、独立して水素原子、またはそれぞれ独立して8個以下の炭素原子を有し、全体として18個以下の炭素原子を包括的に有する有機基であって、R1、R2、R3、R4の少なくとも1つは有機基であり;有機基は独立して、エーテル、エステル、チオエーテル、アミン、またはアミド結合を形成するS、O、またはN原子を任意で含む、アルキル基、アルキリデン基、複素環アルキル基、シクロアルキル基、アリール基、アルケニル基、シクロアルケニル基、またはそれらのヒドロキシ置換誘導体であり;ならびにR1、R2、R3、R4の少なくとも3つは有機基であるか;または有機基の少なくとも1つは、アンモニウム窒素原子に直接結合している第二級もしくは第三級炭素原子を有し;かつ該内部空間がアニオンも含む、請求項63または64記載の組成物。ポリアニオンが、少なくとも005グラム当量L、少なくとも02グラム当量L、少なくとも05グラム当量リットル、または少なくとも06グラム当量Lの濃度で内部空間内に含まれる、請求項65記載の組成物。ビンカアルカロイド薬物がビンクリスチン、ビンブラスチン、ビノレルビン、ビンフルニン、ビンデシン、ビンポセチン、それらの類似体、またはそれらの誘導体である、請求項58~68のいずれか一項記載の組成物。小胞形成脂質がホスファチジルコリンおよびコレステロールを含む、請求項69記載の組成物。ホスファチジルコリンが、天然レシチン、水素化天然レシチン、合成レシチン、12ジステアロイルレシチン、12ジパルミトイルレシチン、12ジミリストイルレシチン、12ジオレオイルレシチン、1ステアロイル2オレオイルレシチン、および1パルミトイル2オレオイルレシチンからなる群より選択される、請求項70記載の組成物。ホスファチジルコリンおよびコレステロールが約32のモル比で含まれる、請求項70記載の組成物。脂質が、中性PEG脂質誘導体またはアニオン性PEG脂質誘導体を含む、請求項58~68のいずれか一項記載の組成物。中性PEG脂質誘導体が総脂質の約01mol~約10molである、請求項73記載の組成物。中性PEG脂質誘導体がPEGセラミドまたはPEGジアシルグリセロールである、請求項73記載の組成物。アニオン性PEG脂質誘導体が総脂質の1mol未満含まれる、請求項73記載の組成物。アニオン性PEG脂質誘導体がNジアシルホスファチジルエタノールアミンである、請求項76記載の組成物。哺乳動物がラットである、請求項58~77のいずれか一項記載の組成物。媒体中にリポソームを含む、ビンカアルカロイド薬物を投与するための組成物であって、該リポソームが内部空間、および該媒体から該内部を分離する膜を有し、該膜が脂質を含む組成物であり、脂質がレシチンおよびコレステロールを約32のモル比で含み;ならびに該ビンカアルカロイド薬物が、約015mgmmolレシチン~約055mgmmolレシチンの薬物脂質比で該リポソーム内に含まれ;ならびに該内部空間が、生分解性ポリアニオンポリマー、ポリアニオン化ポリオール、またはポリアニオン化糖も含み;ならびに該ポリマーまたは糖が、リポソームの該内部空間内に約05グラム当量L~約10グラム当量Lの濃度で含まれ;かつ該ビンカアルカロイド薬物がビノレルビン、ビンクリスチン、またはビンブラスチンである組成物。ポリアニオン化糖がスクロース8硫酸である、請求項79記載の組成物。総脂質の約01mol~約10molの量のイオン的中性ポリ脂質誘導体も含む、請求項80記載の組成物。ポリ脂質誘導体が、ポリジアルキルグリセロール、ポリジアシルグリセロール、またはポリセラミドであって、該ポリ脂質誘導体のポリ部分の分子量が約250~約10000である、請求項81記載の組成物。総脂質の約01mol~約09molの量のアニオン性ポリ脂質誘導体も含む、請求項80記載の組成物。アニオン性ポリ脂質誘導体がPEGホスファチジルエタノールアミンであって、該ポリ脂質誘導体のポリ部分の分子量が約250~約10000である、請求項83記載の組成物。哺乳動物の血液循環におけるリポソームからのビンカアルカロイド薬物の半放出時間が24時間を超える、請求項79~84のいずれか一項記載の組成物。哺乳動物がラットである、請求項85記載の組成物。内部空間を有しかつタキサン化合物を含むリポソームを含む組成物であって、該タキサン化合物が該リポソームの内部空間内に本質的に含まれる組成物。タキサンがイオン的に中性な分子である、請求項87記載の組成物。タキサンの分子構造が親水性ポリマー部分を含まない、請求項88記載の組成物。封入されたタキサンの量が少なくとも005モルモル脂質である、請求項87~89のいずれか一項記載の組成物。封入されたタキサンの量が少なくとも01モルモル脂質である、請求項89記載の組成物。内部空間が、ミセル形成界面活性剤化合物およびシクロデキストリン化合物から選択される溶解補助剤を本質的に含まない、請求項87~92のいずれか一項記載の組成物。タキサンがパクリタキセルまたはドセタキセルである、請求項87~92のいずれか一項記載の組成物。脂質が親水性ポリマーで誘導体化された脂質を含む、前記請求項のいずれか一項記載の組成物。親水性ポリマー誘導体化脂質が総脂質の最大で20モルを構成する、請求項94記載の組成物。親水性ポリマー誘導体化脂質が総脂質の1モル未満を構成する、請求項94記載の組成物。リポソームが、親水性ポリマー誘導体化脂質が存在しない以外は同様に構成されたリポソームの循環寿命よりも2倍未満長い、哺乳動物における血中循環寿命を有する、請求項94記載の組成物。哺乳動物がラットである、請求項97記載の組成物。親水性ポリマー誘導体化脂質が総脂質の約01モル~約09モルを構成する、請求項96記載の組成物。親水性ポリマーがポリまたはその誘導体である、請求項94~99のいずれか一項記載の組成物。親水性ポリマー誘導体化脂質が、ポリ誘導体化リン脂質、ポリ誘導体化ジアシルグリセロール、ポリ誘導体化ジアルキルグリセロール、ポリ誘導体化セラミド、ポリ誘導体化脂肪酸、ポリ誘導体化脂肪アルコール、またはポリ誘導体化ステロールである、請求項94~100のいずれか一項記載の組成物。親水性ポリマーが、少なくとも3つのエチレングリコール単位を有するポリである、請求項94~101のいずれか一項記載の組成物。親水性ポリマーが、約200~約10000の分子量を有するポリである、請求項94~101のいずれか一項記載の組成物。親水性ポリマーが、約500~約5000の分子量を有するポリである、請求項94~101のいずれか一項記載の組成物。リポソームが標的化成分を含む、前記請求項のいずれか一項記載の組成物。標的化成分がタンパク質、ペプチド、多糖、ポリヌクレオチド、天然小分子、合成小分子、これらの組み合わせ、またはこれらの誘導体である、請求項105記載の組成物。標的化成分が、抗体の抗原結合配列を含む、天然に、合成的に、または組換えにより産生されたタンパク質である、請求項105記載の組成物。標的化成分が抗体、その抗原結合断片、抗体の抗原結合ポリペプチド配列を含む単鎖タンパク質、単一ドメイン抗体、上記のいずれかの類似体、または上記のいずれかの誘導体である、請求項105記載の組成物。標的化成分がリポソーム膜に結合し、媒体に曝露している、請求項105記載の組成物。結合した標的化成分が、リポソーム膜を該成分に連結する親水性ポリマーを含む、請求項109記載の組成物。親水性ポリマーがポリである、請求項110記載の組成物。ポリが約250~約30000の分子量を有する、請求項111記載の組成物。標的化成分が細胞においてリポソームの内部移行をもたらす、請求項104~112のいずれか一項記載の組成物。標的化成分が、受容体チロシンキナーゼ、増殖因子受容体、血管新生因子受容体、トランスフェリン受容体、細胞接着分子、またはビタミン受容体に選択的に結合する、請求項104~112のいずれか一項記載の組成物。チロシンキナーゼ受容体が増殖因子受容体である、請求項114記載の組成物。チロシンキナーゼ増殖因子受容体がEGFR、ErbB2、ErbB3、またはErbB4である、請求項115記載の組成物。血管新生因子受容体がbFGF受容体またはVEGF受容体である、請求項114記載の組成物。細胞接着分子がインテグリンである、請求項114記載の組成物。細胞が悪性細胞である、請求項113~118のいずれか一項記載の組成物。請求項1~22のいずれか一項記載の組成物を物質と、該物質がリポソーム内に封入されるのに十分な時間接触させる段階を含む、物質をリポソーム内に封入する方法。物質の少なくとも一部がリポソーム内部空間に入る、請求項120記載の方法。物質の少なくとも90がリポソーム内部空間に入る、請求項120記載の方法。リポソーム内に封入される物質の割合が少なくとも80、少なくとも90、または少なくとも95である、請求項120記載の方法。物質が全体的にカチオン性の物質、治療用物質、または検出マーカーである、請求項120記載の方法。総脂質に対する物質のモル比が少なくとも約005、約01、約02、または約03である、請求項120記載の方法。治療用物質が抗菌治療用物質、抗ウイルス治療用物質、または抗新生物治療用物質である、請求項120記載の方法。治療用物質がアミノグリコシド系抗生物質またはフルオロキノロン誘導体である、請求項120記載の方法。治療用物質が、トポイソメラーゼ阻害剤、ファルネシルトランスフェラーゼ阻害剤、チロシンキナーゼ阻害剤、サイクリン依存性キナーゼ阻害剤、ホスファターゼ阻害剤、オーロラキナーゼ阻害剤、微小管脱重合剤、微小管安定化剤、アルキル化剤、酵素、酵素阻害剤、ヒストンデアセチラーゼ阻害剤、代謝拮抗剤、受容体結合剤、ホルモン、ホルモン拮抗剤、ヌクレオチド、ポリヌクレオチド、上記のいずれかの誘導体、上記のいずれかのプロドラッグ、および上記のいずれかの類似体からなる群より選択される、請求項124記載の方法。治療用物質が、アントラサイクリン化合物、カンプトテシン化合物、ビンカアルカロイド、エリプチシン化合物、タキサン化合物、ワートマンニン化合物、ピラゾロピリミジン化合物、上記のいずれかの誘導体、上記のいずれかのプロドラッグ、および上記のいずれかの類似体からなる群より選択される、請求項124記載の方法。治療用物質が、ドキソルビシン、ダウノルビシン、マイトマイシンC、エピルビシン、ピラルビシン、ルビドマイシン、カルシノマイシン、Nアセチルアドリアマイシン、ルビダゾン、5イミドダウノマイシン、Nアセチルダウノマイシン、ダウノリリン、ミトキサントロン、カンプトテシン、9アミノカンプトテシン、7エチルカンプトテシン、10ヒドロキシカンプトテシン、9ニトロカンプトテシン、1011メチレンジオキシカンプトテシン、9アミノ1011メチレンジオキシカンプトテシン、9クロロ1011メチレンジオキシカンプトテシン、イリノテカン、トポテカン、ラートテカン、シラテカン、1011エチレンジオキシ20カンプトテシン、71011メチレンジオキシ20カンプトテシン、7エチルカンプトテシン、ビンクリスチン、ビンブラスチン、ビノレルビン、ビンフルニン、ビンポセチン、ビンデシン、エリプチシン、63アミノプロピルエリプチシン、2ジエチルアミノエチルエリプチシニウムおよびその塩、ダテリプチウム、レテリプチン、パクリタキセル、ドセタキセル、上記のいずれかの誘導体、上記のいずれかのプロドラッグ、ならびに上記のいずれかの類似体からなる群より選択される、請求項124記載の方法。治療用物質が、抗ヒスタミンエチレンジアミン誘導体、ブロムフェニファミン、ジフェンヒドラミン、抗原虫薬、キノロン、ヨードキノール、アミジン化合物、ペンタミジン、抗蠕虫化合物、ピランテル、抗住血吸虫薬、オキサムニキン、抗真菌トリアゾール誘導体、フルコナゾール、イトラコナゾール、ケトコナゾール、ミコナゾール、抗菌セファロスポリン、セファゾリン、セフォニシド、セフォタキシム、セフタジミド、セフオキシム、抗菌βラクタム誘導体、アズトレオパム、セフメタゾール、セフォキシチン、エリスロマイシン群の抗菌剤、エリスロマイシン、アジスロマイシン、クラリスロマイシン、オレアンドマイシン、ペニシリン化合物、ベンジルペニシリン、フェノキシメチルペニシリン、クロキサシリン、メチシリン、ナフシリン、オキサシリン、カルベニシリン、テトラサイクリン化合物、ノボビオシン、スペクチノマイシン、バンコマイシン;抗ミコバクテリア薬、アミノサリチル酸、カプレオマイシン、エタンブトール、イソニアジド、ピラジナミド、リファブチン、リファンピン、クロファジミン、抗ウイルスアダマンタン化合物、アマンタジン、リマンタジン、キニジン化合物、キニーネ、キナクリン、クロロキン、ヒドロキシクロロキン、プリマキン、アモジアキン、メフロキン、抗菌キオノロン、シプロフロキサシン、エノキサシン、ロメフロキサシン、ナリジクス酸、ノルフロキサシン、オフロキサシン、スルホンアミド;尿路抗菌剤、ニトロフラントイン、トリメトプリム;ニトロイミダゾール誘導体、メトロニダゾール、コリン作動性第四級アンモニウム化合物、アンベチニウム、ネオスチグミン、フィゾスチグミン、抗アルツハイマーアミノアクリジン、タクリン、抗パーキンソン病薬、ベンズトロピン、ビペリデン、プロシクリジン、トリヘキシルフェニジル、抗ムスカリン剤、アトロピン、ヒヨスチアミン、スコポラミン、プロパンテリン、アドレナリン作動化合物、ドーパミン、セロトニン、アルブテロール、ドブタミン、エフェドリン、エピネフリン、ノルエピネフリン、イソプロテレノール、メタプロペレノール、サルメテロール、テルブタリン、セロトニン再取り込み阻害剤、エルゴタミン誘導体、クラーレ系の筋弛緩剤、中枢作用筋弛緩剤、バクロフェン、シクロベンゼピン、ダントロレン、ニコチン、ニコチン受容体拮抗薬、βアドレナリン遮断薬、アセブチル、アミオダロン、ベンゾジアゼピン化合物、ジルチアゼム、抗不整脈薬、ジソピラミド、エンカイジン、局所麻酔化合物、プロカイン、プロカインアミド、リドカイン、フレカイニド、キニジン;ACE阻害剤、カプトプリル、エナラプリラート、フォシノプリル、キナプリル、ラミプリル;アヘン誘導体、コデイン、メペリジン、メサドン、モルヒネ好ましい態様の説明本発明は一般に、種々の物質、特に治療剤および造影剤の送達に有用な方法およびリポソーム組成物に関する。置換アンモニウムおよびポリアニオンが、物質、例えば化合物のリポソーム内への充填およびリポソーム内での保持に有用であるというのが、本発明の発見である。したがって、本発明は、置換アンモニウムおよびまたはポリアニオンを含むリポソーム組成物およびキット、ならびにこれらのリポソーム組成物を作製する方法を提供する。本発明の1つの特徴に従って、本発明は、内部空間内に以下の式の1つまたは複数の置換アンモニウム化合物を含むリポソームの組成物を提供する。式中、R1、R2、R3、およびR4はそれぞれ独立して水素または有機基であり、R1、R2、R3、およびR4の少なくとも1つは、任意にその炭化水素鎖内に例えばその中でエーテル、エステル、スルフィド、アミン、またはアミド結合を形成するS、O、またはN原子を含む、アルキル基、アルキリデン基、複素環アルキル基、シクロアルキル基、アリール基、アルケニル基、またはシクロアルケニル基、それらのヒドロキシ置換誘導体などの有機基である。R1、R2、R3、およびR4の2つ以下が有機基である場合は、本発明に従って、有機基の少なくとも1つおよび好ましくは2つは、アンモニウム窒素原子に直接結合している第二級または第三級炭素原子を有する、すなわち置換アンモニウムは立体障害アンモニウムである。一般に、本発明のリポソームの内部空間内に、非置換アンモニウムイオンなどの滴定可能なアンモニウム、ならびに第一級および第二級直鎖アルキルアンモニウムイオンが存在することにより、例えば能動的、遠隔、または膜間勾配駆動充填の機構を介して、弱両親媒性塩基の封入の増大が提供されることが知られている。しかし、これらのアンモニア化合物は、求核置換反応に容易に入り、そうでなければリポソーム捕捉物質と化学的に反応する水素原子を有し、したがってリポソーム充填工程中または工程後に物質の化学的完全性を損ない得る。そのため、捕捉される置換アンモニウム化合物は、不安定であるかまたは封入物質を含み得るリポソーム成分と容易に反応する化学的機能を欠いて、より化学的に不活性であることが望ましい。予想外にも、本発明者らは、置換可能な水素を有さない置換された第三級および第四級アンモニウム、またはアンモニウム窒素に結合している1つもしくは2つの第二級もしくは第三級炭素原子を有するような隣接する大きな有機基によってアンモニウム水素原子への接近が立体的に妨げられる、立体障害型の第一級もしくは第二級アンモニウムを内部空間内に含むリポソーム組成物が、顕著な物質充填能ばかりでなく、生体内におけるリポソームからの早期放出に対するリポソーム捕捉物質、例えば薬物の安定性の改善も示すことを発見した。1つの態様において、リポソームに捕捉される置換アンモニウム化合物は薬学的に不活性であり、すなわちリポソーム捕捉物質の有効量を送達するのに十分なリポソーム膜材料の量の範囲内で生存対象に投与された場合に、有害な生理学的反応を誘発しない。別の態様において、本発明の置換アンモニウムは、対象に対して許容可能なレベルの毒性を有する。通常、許容可能なレベルの毒性とは、本発明の置換アンモニウムの中毒量、例えば最大耐量または50致死性をもたらす用量が、本発明のリポソーム内に充填されるリポソーム捕捉物質、例えば薬物の中毒量よりも少なくとも2倍、少なくとも4倍、少なくとも8倍、または少なくとも10倍高いことを意味する。例えば、硫酸トリエチルアンモニウムは、そのLD50が抗癌剤であるドキソルビシンのLD50よりも約40倍高いために、本発明による許容可能なレベルの毒性を有する。置換アンモニウムおよび関心対象の物質の毒性レベルまたは生理学的反応は、既知でない場合には、生物医学分野の当業者に周知である日常的技法により容易に確立することができる。例えば、SCGadDrugSafetyEvaluationWileyNewYork2002を参照されたい。遊離の薬物およびまたはリポソームにより製剤化された薬物の毒性を定量化する1つの方法は、本明細書の実施例16に記載されている。1つの好ましい態様において、R1、R2、R3、またはR4における置換有機基は、置換アンモニウムが水性環境中で実質的に真溶液を形成し、ミセル、二重層、または類似の自己組織化構造を形成しないことを確実にするのに十分な大きさおよび物理化学的特性のものである。したがって、本発明の置換アンモニウムは好ましくは、リポソームの二重層部分にほとんど分布しないかまたは実質的に分布せず、よって置換アンモニウムを捕捉しているリポソームの不安定化、可溶化、または透過化の危険性が最小限に抑えられる。置換アンモニウムの有機基は典型的には、最大で8個の炭素原子、最大で6個の炭素原子、または最大で4個の炭素原子を包括的に含む炭化水素であり、全体として、置換基は最大で18、最大で16、最大で12、または最大で9個の炭素原子を包括的に含む。これらの置換炭化水素基は、連結された第一級、第二級、または第三級炭素原子、およびその末端でアンモニウム窒素に直接結合して複素環を形成するか、またはその末端でアンモニウム水素置換基の炭素原子に直接結合するシクロアルキル基の任意の組み合わせを含む。これらの置換アルキル基はまた、例えばエーテル、アセタール、アミン、またはスルフィド基などの機能基を形成する、およびアルキル炭素鎖に結合した例えばヒドロキシル基などの機能基を形成するヘテロ原子、例えば酸素、窒素、または硫黄をそれらの炭素鎖内に含み得る。本発明の有機基の例には、非限定的に、アルキル、アルキリデン、複素環アルキル、シクロアルキル、アリール、アルケニル、シクロアルケニル、またはそれらのヒドロキシ置換誘導体、例えば置換アンモニウム内でNを含めて環を形成するヒドロキシ置換アルキリデンが含まれる。別の態様において、置換アンモニウムは以下のものである:複素環アンモニウム、すなわちR1、R2、R3、またはR4の少なくとも2つが環を形成するアンモニウム;立体障害型の第一級アンモニウム;または立体障害型の第二級アンモニウム。一般に、立体障害型の第一級または第二級アンモニウムには、R1、R2、R3、およびR4の1つまたは2つが分子を立体的に込み入らせるアルキル基で置換された任意の置換アンモニウム、例えばR1、R2、R3、およびR4の1つまたは2つが、置換アンモニウムの窒素に結合している少なくとも1つの第二級または第三級アルキル炭素原子を有する1つまたは2つのシクロアルキル基またはアルキル基で置換された任意の置換アンモニウムが含まれる。そのような複素環アンモニウム、立体障害型の第一級アンモニウム、および立体障害型の第二級アンモニウムの例には、非限定的に、イソプロピルエチルアンモニウム、イソプロピルメチルアンモニウム、ジイソプロピルアンモニウム、tertブチルエチルアンモニウム、ジシクロヘキシルアンモニウム、モルフォリン、ピリジン、ピペリジン、ピロリジン、ピペラジン、tertブチルアミン、2アミノ2メチルプロパノール1、2アミノ2メチルプロパンジオール13、およびトリスアミノメタンのプロトン化型が含まれる。これらの置換アンモニウム化合物は一般に様々な塩の形態で市販されているか、または酸で中和することによりそれらの対応するアミンから容易に調製される。さらに別の態様において、置換アンモニウムは第三級または第四級アンモニウムであり、これには非限定的に、トリメチルアンモニウム、トリエチルアンモニウム、トリブチルアンモニウム、ジエチルメチルアンモニウム、ジイソプロピルエチルアンモニウム、トリイソプロピルアンモニウム、Nメチルモルフォリニウム、Nヒドロキシエチルピペリジニウム、Nメチルピロリジニウム、およびNNジメチルピペラジニウム、テトラメチルアンモニウム、テトラエチルアンモニウム、およびテトラブチルアンモニウムが含まれる。これらの置換アンモニウム化合物は一般に様々な塩の形態で市販されているか、または酸で中和することによりそれらの対応するアミンから容易に調製される。さらに別の態様において、本発明による置換アンモニウム化合物は、全体的にカチオン性の化合物である、すなわち、典型的に約pH2~約pH8のpHの水溶液中という物質封入条件下において、例えば窒素原子のイオン化の結果として正味の正電荷を有する。さらに別の態様において、リポソーム内に封入される置換された第一級、第二級、または第三級アンモニウム化合物は、外界温度において希釈水溶液中で決定される少なくとも約80、少なくとも約85、少なくとも約90、少なくとも95、または少なくとも100という酸解離定数の負の対数値を有する。パラメータpKaは、一般にその塩基性特性の強度を特徴づけるアンモニウム化合物の周知の特徴であり、pKaの決定方法は当技術分野において慣習的でありかつ日常的である。多くのアミンおよびそれらのプロトン化型のpKa値は、化学および薬理学の参考図書に示されている。例えば、IUPACHandbookofPharmaceuticalSaltsedbyPHStahlandCGWermuthWileyVCH2002;CRCHandbookofChemistryandPhysics82ndEditionedbyDRLideCRCPressFlorida2001p844to856を参照されたい。一般に、pKaが高いほどより強い塩基を特徴づける。例示的な置換アンモニウム化合物および非置換アンモニウムは、以下のpKa値を有する:ピロリジン、1131;ピペリジン、1112;ジイソプロピルアミン、1105;ジエチルアミン、1093;トリエチルアミン、1075;ジメチルアミン、1073;tertブチルアミン、1068;シクロヘキシルアミン、1066;メチルアミン、1066;エチルアミン、1065;プロピルアミン、1054;イソプロピルアミン、1053;Nエチルピペリジン、1045;ジシクロヘキシルアミン、104;Nメチルピペリジン、1038;ジエチルメチルアミン、1035;ジメチルプロピルアミン、1015;トリメチルアミン、98;ピペラジン、973、533;2アミノ2メチルプロパノール、969;NNジメチルピペラジン、966、52;ジエチルアミン、958;エタノールアミン、95;Nヒドロキシエチルピロリジン、944;ジエタノールアミン、928;アンモニア、927;ジメチルアミン、883;2アミノ2メチルプロパンジオール13、88;モルフォリン、85;トリスアミノメタン、83;Nメチルグルカミン、803;トリエタノールアミン、776;Nエチルモルフォリン、767;Nヒドロキシエチルモルフォリン、739;イミダゾール、703;ピリジン、523。原則として、アンモニウム化合物内で水素がアルキル基またはシクロアルキル基で置換されることにより、pKa値は上昇する。特に、置換アルキル基内に複数のヒドロキシルもしくはエーテル機能が存在するか、または窒素含有複素環基内に芳香族性が存在することで、ヒドロキシルまたはエーテル機能をもたない同様の置換アンモニアと比較してpKa値は低下する。2つ以上のアンモニウム基を有する化合物は通常、第1アンモニウム基よりもはるかに低い第2またはその次のアンモニウム基のpKaを有する。本発明者らは予想外にも、より高いpKa値を有する、すなわちより強力な塩基性アミンによって形成される置換アンモニウムが、リポソーム内の薬物の安定化において、より弱いアミンから形成される置換アンモニウムよりも効果的であることを発見した。例えば、トリエチルアンモニウムのIHPおよびSOS塩はいずれも、インビボにおけるリポソーム内のイリノテカンの安定化において、トリエタノールアンモニウムの対応する塩よりも顕著により効果的であった。本発明のリポソーム組成物内に含まれる置換アンモニウムは、任意の適切な形態、例えば塩であってよい。適切な塩には、薬学的に許容される塩が含まれる。例えば、PHStahlCGWermuthHandbookofPharmaceuticalSaltsWileyVCHWeinheim2002を参照されたい。1つの態様において、置換アンモニウムは、本発明の1つまたは複数のポリアニオンを含む塩である。最適には、本発明の置換アンモニウム塩内の対イオンは、塩を水溶性にし、薬学的に不活性であり、治療用物質もしくは検出物質と接触した場合に沈殿もしくはゲルを形成し得、およびまたは置換アンモニウムもしくはその非解離アミン型よりもリポソーム膜を介した透過性が低い。一般に、本発明の置換アンモニウム塩は、リポソーム内の、例えば水性空間内で真溶液truesolutionを形成し、ミセル、二重層、ゲル、または結晶相などの、顕著な量の凝縮相を形成しない。置換アンモニウムと塩形成アニオン、例えばポリアニオンの相対量は、化学量論的に等量である点またはその近傍であり、典型的には、例えば置換アンモニウムイオンの共役塩基の解離定数に依存して、3~9の範囲のpH、より頻繁にはpH4~8を有する。一般に、置換アンモニウムは、本発明のリポソームの内部に、すなわち内部空間に含まれる。1つの態様において、置換アンモニウムは、リポソームを取り囲む外部の媒体から部分的に、または実質的に完全に除去される。そのような除去は、例えば希釈、イオン交換クロマトグラフィー、サイズ排除クロマトグラフィー、透析、限外濾過、沈殿など、当業者に周知である任意の適切な手段によって達成され得る。本発明の別の特徴に従って、本発明は、ポリアニオンを含むリポソームの組成物を提供する。本発明のポリアニオンは、リポソーム内部の、例えば水性空間内で3単位以上の正味の負イオン電荷をもたらす、2つ以上の負電荷基を有する任意の適切な化学物質であってよい。本発明のポリアニオンは、二価アニオン、三価アニオン、多価アニオン、高分子多価アニオン、ポリアニオン化ポリオール、またはポリアニオン化糖であってよい。硫酸、リン酸、ピロリン酸、酒石酸、コハク酸、マレイン酸、ホウ酸、およびクエン酸は、非限定的に、そのような二価および三価アニオンの例である。1つの好ましい態様において、本発明のポリアニオンは、有機または無機骨格、および複数のアニオン機能基、すなわち中性水溶液中で負電荷にイオン化し得、骨格に組み込まれるかまたは付加される機能基を有するポリアニオンポリマーである。ポリマーとは、それぞれ比較的軽くかつ単純な分子の、反復し連結された単位からなる、通常高分子量の天然または合成化合物である。例示的なポリアニオンポリマーは、ポリリン酸、ポリビニル硫酸、ポリビニルスルホン酸、アニオン化ポリアクリル酸ポリマー、アニオン化ポリアミン、例えば、ポリスルホン酸化ポリなど;ポリ硫酸化、ポリカルボン酸化、またはポリリン酸化多糖;酸性ポリアミノ酸;ポリヌクレオチド;他のポリリン酸化、ポリ硫酸化、ポリスルホン酸化、ポリホウ酸化、またはポリカルボン酸化ポリマーである。そのような多価アニオンおよびポリマーは当技術分野において周知であり、多くは市販されている。本発明の高分子アニオンは好ましくは生分解性のものであり、すなわち生体内で非毒性単位に分解され得る。例示的な生分解性高分子アニオンは、ポリリン酸である。別の好ましい態様において、ポリアニオンはポリアニオン化ポリオールまたはポリアニオン化糖である。ポリオールとは、例えば線状、分岐型、または環状炭素骨格に結合している複数のヒドロキシル基を有する有機分子である。したがっ、ポリオールは、その他の用語でポリヒドロキシル化化合物と特徴づけられ得る。好ましくは、ポリオール中の炭素原子の大部分がヒドロキシル化されている。ポリオールは、当技術分野において周知の分子である。直鎖状および環状ポリオールのいずれも使用が可能である。本発明の例示的なポリオールは、非限定的に:エチレングリコール;グリセロール、トレイトールtreitol、エリスリトール、ペンタエリスリトール、マンニトール、グルシトール、ソルビトール、ソルビタン、キシリトール、ラクチトールlactitol、マルチトール、フルクチトールfructitol、およびイノシトールである。糖は通常、連結された、主にヒドロキシル化された炭素原子の群内に、環状アセタール、環状ケタール、ケトン、もしくはアルデヒド基、またはそれらの付加化合物を含む。糖は多くの場合天然化合物である。水性媒体中で糖を加水分解することにより、単糖と称される単位が生じる。典型的には、水溶液中では、5個または6個の炭素原子の単糖糖分子は、環状構造の環状ヘミアセタールを形成する。好ましくは、本発明の糖は、単糖または二糖である、すなわちそれぞれ3~7個、好ましくは3~6個の炭素原子を有する1つまたは2つの単糖単位からなる。本発明の例示的な糖は、非限定的に、単糖六炭糖、例えば、グルコース、ガラクトース、マンノース、フルクトースなど;単糖五炭糖、例えば、キシロース、リボース、アラビノースなど、ならびに二糖、例えば、ラクトース、トレハロース、スクロース、マルトース、およびセロビオースなどである。環を形成する、いくつかの連結された糖単位からなる化合物、およびその誘導体もまた使用することができる。糖の還元は、ポリオールを得る1つの方法である。スクロースまたはトレハロースなどの、より安定な非還元性および非代謝性二糖が好ましい。種々のポリオール、単糖、および二糖が市販されている。ポリアニオン化ポリオールまたは糖とは、そのヒドロキシル基がアニオン基で完全にまたは部分的に修飾または置換されたポリオールまたは糖である。したがって、ポリアニオン化ポリオールまたはポリアニオン化糖は、ポリオール部分または糖部分に加えて、そこ結合しているアニオン基を含む。例示的なアニオン基には、非限定的に、カルボン酸、炭酸、チオ炭酸、ジチオ炭酸、リン酸、ホスホン酸、硫酸、スルホン酸、硝酸、およびホウ酸が含まれる。ポリアニオン化糖またはポリオールの少なくとも1つのアニオン基は、強力なアニオン基である、すなわち水性媒体中に存在する場合に、広範囲のpH、例えばpH3~12、好ましくはpH2~12において50を超える割合でイオン化されているか、または3以下、好ましくは2以下のlog解離定数を有することが好ましい。ポリオールまたは糖のポリアニオン化は、当技術分野において周知である種々の化学的工程によって達成され得る。例えば、ピリジンまたは2ピコリン中でポリオールおよびまたは糖を三酸化硫黄またはクロロスルホン酸と反応させることで、いくつかのまたはすべてのヒドロキシル基が硫酸残基でエステル化され、ポリ硫酸化糖またはポリオールが提供される。本発明の例示的な硫酸化糖は、非限定的にスクロース6硫酸、スクロース7硫酸、およびスクロース8硫酸を含む硫酸化糖である。同様に、塩基触媒の存在下においてオキシ塩化リンまたはジエチルクロロリン酸と反応させることで、ポリリン酸化ポリオールまたは糖が生じる。ポリリン酸化ポリオールはまた、天然源から単離される。例えば、イノシトール6リン酸などのイノシトールポリリン酸は、トウモロコシから単離される。本発明の実施に適した種々の硫酸化、スルホン酸化、およびリン酸化糖およびポリオールは、例えば、米国特許第5783568号および米国特許第5281237号に開示されており、これらは参照として本明細書に組み入れられる。強酸解離過程のみを有するポリアニオン化ポリヒドロキシル化化合物、例えば、硫酸モノエステルなどの、約30未満、好ましくは約20未満のpKaを有する群が、リン酸モノエステルなどの、弱酸解離段階もまた有するポリアニオン化ポリヒドロキシル化化合物よりも良好な薬物保持を有するリポソーム封入を提供することが予想外にも見出された。以下の実施例73では、この発見を例証する。ポリオールおよびまたは糖を2分子以上のホウ酸で錯体化することによっても、ポリアニオン化産物が得られる。アルカリの存在下においてポリオールおよびまたは糖を二硫化炭素と反応させると、ポリアニオン化誘導体が生じる。ポリアニオン化ポリオールまたは糖誘導体は遊離酸の形態で単離され、適切な塩基で、例えばアルカリ金属水酸化物、水酸化アンモニウムで、または好ましくは本発明の置換アンモニウムのポリアニオン塩を提供するストレートな形態または水酸化置換アンモニウムの形態の置換アミン、例えば本発明の置換アンモニウムに相当するアミンで中和され得る。または、ポリアニオン化ポリオール糖のナトリウム塩、カリウム塩、カルシウム塩、バリウム塩、またはマグネシウム塩が単離され、任意の周知の方法により、例えばイオン交換により、適切な形態、例えば置換アンモニウム塩の形態に変換され得る。本発明のポリアニオンは通常、単位当たり、例えば炭素鎖内の炭素原子もしくは炭素環当たり、または糖内の単糖単位当たり、少なくとも2つ、3つ、または4つの負電荷基という電荷密度を有する。本発明のポリアニオン化糖または環状ポリオールは、好ましくは少なくとも75の利用可能なポリアニオン化ヒドロキシル基、およびより好ましくは100の利用可能なポリアニオン化ヒドロキシル基を有する。さらに、本発明のリポソーム内でのポリアニオン化は通常、リポソーム内に封入される物質の、意図する作用部位における送達および放出に適合するかまたはそれらを促進するが、封入物質の早期の、すなわちリポソームが意図する作用部位に到達する前の放出を減少させるレベルである。本発明に従って、リポソーム内のポリアニオン化の程度を用いて、リポソーム内に封入された物質の放出特性、例えば放出速度および放出速度論を制御することができる。一般に、ポリアニオン化の程度は、全アニオン量に対するポリアニオン化糖またはポリオールの量に基づいて、またはポリアニオンがアニオンの唯一の種類である場合には、ポリアニオン、例えば本発明のリポソーム内のポリアニオン化糖もしくはポリオールまたはそれらの混合物の全ポリアニオン化能に対するポリアニオン化の割合に基づいて評価され得る。1つの態様において、ポリアニオン化糖またはポリオールは1つまたは複数の他のアニオンと混合されるが、他のアニオンの量に対するポリアニオン化糖またはポリオールの量が少ないほど、リポソームから物質が速く放出される。通常、捕捉物質がその意図する作用部位においてリポソームから放出されるのが遅すぎる場合には、ポリアニオン化糖またはポリオールと1つまたは複数の他の一価アニオンまたは多価アニオンとの混合物を使用することで、所望の物質放出速度を達成することができる。または、様々なポリアニオン化の程度を有するポリアニオン化糖またはポリオールの混合物を使用することができる。1つの態様において、本発明のリポソーム内のポリアニオン化の程度は、例えば封入物質を含むリポソーム内の全アニオンの01~99、10~90、または20~80である。一般に、本発明のリポソーム組成物は、任意の適切な形態の、例えば酸、またはポリアニオンおよびカチオンを含む塩の形態の、本発明の1つまたは複数のポリアニオンを含み得る。ポリアニオン、例えばポリアニオン化糖またはポリオールの量は、カチオンの量と化学量論的に等量であってもよいし、またはカチオンの量と異なってもよい。1つの態様において、本発明のリポソーム組成物はカチオンの1つまたは複数のポリアニオン塩を含み、リポソーム膜を介してカチオン濃度勾配またはpH勾配が存在する。別の態様において、本発明のリポソーム組成物は、本発明の1つまたは複数の置換アンモニウムポリアニオン塩を含む。さらに別の態様において、本発明のリポソーム組成物はリポソーム内にポリアニオンを含み、リポソームを含む媒体中のポリアニオンは、例えば、希釈、イオン交換クロマトグラフィー、サイズ排除クロマトグラフィー、透析、限外濾過、吸収、沈殿など、当業者に周知である任意の適切な手段により部分的にまたは実質的に除去される。さらに別の態様において、捕捉されたポリアニオン、例えばポリアニオン化ポリオールまたはポリアニオン化糖を含むリポソームはまた、リポソーム内に物質を保持するのに有効な膜間勾配を有する。そのような膜間勾配の例は、pH勾配、電気化学ポテンシャル勾配、アンモニウムイオン勾配、置換アンモニウムイオン勾配、または溶解度勾配である。置換アンモニウム勾配は典型的には、第一級、第四級、第三級、または第四級アンモニウムなど、少なくとも1つのCN結合を含む置換型のアンモニウムイオンを含む。膜間勾配を生成する方法は、リポソームの技術分野において日常的である。本発明のさらに別の特徴に従って、本発明のリポソーム組成物は、本発明の1つまたは複数の置換アンモニウムおよびまたはポリアニオン、ならびに化学物質または生物学的物質、例えば治療用物質または検出物質を含む。例えば、本発明のリポソーム組成物内に含まれる物質は、治療用物質、インク、色素、磁性化合物、肥料、疑似餌、生体触媒、味覚もしくは臭気修飾物質、漂白剤、または例えば核磁気共鳴画像法、光学的画像法、蛍光発光画像法、もしくは核画像法などの当技術分野において周知である任意の適切な手段によって検出可能な任意の物質であってよい。簡便には、本発明のリポソーム組成物内に含まれるかまたはリポソーム組成物に充填され得る物質は、弱塩基性でありかつ膜透過性である物質、例えばアミン含有または窒素塩基物質である。1つの態様において、本発明のリポソーム組成物内に含まれる物質は治療用物質である。別の態様において、リポソーム組成物内に含まれる物質は抗癌物質である。一般に知られている商業的に認可された抗新生物薬の一部を分類した部分的一覧を以下に示す。構造に基づいたクラス:フルオロピリミジン系5FU、フルオロデオキシウリジン、フトラフール、5デオキシフルオロウリジン、UFT、S1、カペシタビン;ピリミジンヌクレオシド系デオキシシチジン、シトシンアラビノシド、5アザシトシン、ゲムシタビン、5アザシトシンアラビノシド;プリン系6メルカプトプリン、チオグアニン、アザチオプリン、アロプリノール、クラドリビン、フルダラビン、ペントスタチン、2クロロアデノシン;プラチナ類似体シスプラチン、カルボプラチン、オキサリプラチン、テトラプラチン、プラチナDACH、オルマプラチン、CI973、JM216;アントラサイクリン系アントラセンジオン系ドキソルビシン、ダウノルビシン、エピルビシン、イダルビシン、ミトキサントロン;エピポドフィロトキシン系エトポシド、テニポシド;カンプトテシン系イリノテカン、トポテカン、ラートテカン、シラテカン、9アミノカンプトテシン、1011メチレンジオキシカンプトテシン、9ニトロカンプトテシン、TAS103、71011エチレンジオキシ20カンプトテシン、7エチル20カンプトテシン;ホルモンおよびホルモン類似体ジエチルスチルベストロール、タモキシフェン、トレミフェン、トルムデックス、チミタック、フルタミド、ビカルタミド、フィナステリド、エストラジオール、トリオキシフェン、ドロルオキシフェン、酢酸メドロキシプロゲステロン、酢酸メゲステロール、アミノグルテチミド、テストラクトン他;酵素、タンパク質、および抗体アスパラギナーゼ、インターロイキン類、インターフェロン類、ロイプロリド、ペグアスパラガーゼ他;ビンカアルカロイド系ビンクリスチン、ビンブラスチン、ビノレルビン、ビンデシン;タキサン系パクリタキセル、ドセタキセル。作用機序に基づいたクラス:抗ホルモン剤ホルモンおよびホルモン類似体についての分類を参照、アナストロゾール:葉酸代謝拮抗剤メトトレキセート、アミノプテリン、トリメトレキセート、トリメトプリム、ピリトレキシム、ピリメタミン、エダトレキセート、MDAM;抗微小管剤タキサン系およびビンカアルカロイド系;アルキル化剤ナイトロジェンマスタード系、オキサザホスホリン系、アルキルスルホネート系、ニトロソ尿素系、チオテパ、ダカルバジン他;代謝拮抗剤上記のプリン系、ピリミジン系、およびヌクレオシド系;抗生物質アントラサイクリン系アントラセンジオン系、ブレオマイシン、ダクチノマイシン、マイトマイシン、プリカマイシン、ペントスタチン、ストレプトゾシン;トポイソメラーゼ阻害剤カンプトテシン系、エピポドフィロトキシン系、mAMSA、エリプチシン系;抗ウイルス剤AZT、ザルシタビン、ゲムシタビン、ジダノシン他;各種細胞毒性物質ヒドロキシ尿素、ミトタン、融合毒素、PZA、ブリオスタチン、レチノイド類、酪酸および酪酸誘導体、ペントサン、フマギリン他。上記に加えて、抗癌物質には非限定的に、任意のトポイソメラーゼ阻害剤、ビンカアルカロイド、およびビンポセチン、微小管脱重合剤または不安定化剤、微小管安定化剤、パクリタキセルまたはドセタキセルのアミノアルキルまたはアミノアシル類似体プロピオニルパクリタキセル、7パクリタキセル、および7Lアラニルパクリタキセル、アルキル化剤、受容体結合剤、チロシンキナーゼ阻害剤、ホスファターゼ阻害剤、サイクリン依存性キナーゼ阻害剤、酵素阻害剤、オーロラauroraキナーゼ阻害剤、ヌクレオチド、ポリヌクレオチド、およびファルネシルトランスフェラーゼ阻害剤が含まれる。別の態様において、本発明のリポソーム組成物内に含まれる物質は、アントラサイクリン化合物もしくは誘導体、カンプトテシン化合物もしくは誘導体、エリプチシン化合物もしくは誘導体、ビンカアルカロイドもしくはビンカアルカロイド誘導体、ワートマンニン、その類似体および誘導体、またはオーロラキナーゼ阻害特性を有するピラゾロピリミジン化合物の治療用物質である。さらに別の態様において、本発明のリポソーム組成物内に含まれる物質は、アントラサイクリン系薬剤、ドキソルビシン、ダウノルビシン、マイトマイシンC、エピルビシン、ピラルビシン、ルビドマイシン、カルシノマイシン、Nアセチルアドリアマイシン、ルビダゾン、5イミドダウノマイシン、Nアセチルダウノマイシン、ダウノリリン、ミトキサントロン;カンプトテシン化合物、カンプトテシン、9アミノカンプトテシン、7エチルカンプトテシン、10ヒドロキシカンプトテシン、9ニトロカンプトテシン、1011メチレンジオキシカンプトテシン、9アミノ1011メチレンジオキシカンプトテシン、9クロロ1011メチレンジオキシカンプトテシン、イリノテカン、トポテカン、ラートテカン、シラテカン、1011エチレンジオキシ20カンプトテシン、71011メチレンジオキシ20カンプトテシン、7エチルカンプトテシン;エリプチシン化合物、エリプチシン、63アミノプロピルエリプチシン、2ジエチルアミノエチルエリプチシニウムおよびその塩、ダテリプチウム、レテリプチンである。さらに別の態様において、本発明のリポソーム内に含まれる物質は、非限定的に以下のいずれかを含む薬学的物質である:抗ヒスタミンエチレンジアミン誘導体、ジフェンヒドラミン;抗原虫薬:キノロン;アミジン類;抗蠕虫薬;抗住血吸虫薬;抗真菌トリアゾール誘導体;抗菌セファロスポリン類、セフォタキシム、セフタジミド、セフオキシム;抗菌βラクタム誘導体、セフメタゾール、セフォキシチン;エリスロマイシン群の抗菌剤;ペニシリン類;テトラサイクリン類;その他の抗菌抗生物質、ノボビオシン、スペクチノマイシン、バンコマイシン;抗ミコバクテリア薬:アミノサリチル酸、カプレオマイシン、エタンブトール、イソニアジド、ピラジナミド、リファブチン、リファンピン、クロファジム;抗ウイルスアダマンタン類:アマンタジン、リマンタジン;キニジン誘導体:クロロキン、ヒドロキシクロロキン、プロマキン、キオノン;抗菌キオノロン:シプロフロキサシン、エノキサシン、ロメフロキサシン、ナリジクス酸、ノルフロキサシン、オフロキサシン;スルホンアミド類;尿路抗菌剤:メテナミン、ニトロフラントイン、トリメトプリム;ニトロイミダゾール類:メトロニダゾール;コリン作動性第四級アンモニウム化合物、ネオスチグミン、フィゾスチグミン;抗アルツハイマーアミノアクリジン類;抗パーキンソン病薬;アドレナリン作動性ドーパミン類、サルメテロール、テルブタリン;エルゴタミン誘導体;筋弛緩剤またはキュレーン系;中枢作用筋弛緩剤;バクロフェン、シクロベンゼピン、ダントロレン;ニコチン;βアドレナリン遮断薬、アミオダロン;ベンゾジアゼピン類;抗不整脈薬、エンカイジン、局所麻酔系プロカイン、プロカインアミド、リドカイン、フレカイニド、キニジン;ACE阻害剤:カプトプリル、エナラプリラート、フォシノプリル、キナプリル、ラミプリル;抗高脂血症剤:フルバスタチン、ゲムフィブロジル、HMGcoA阻害剤;降圧剤:クロニジン、グアナベンズ、プラゾシン、グアネチジン、グラナドリル、ヒドララジン;および非冠動脈血管拡張剤;ジピリダモール。本発明に従って、本発明のリポソーム組成物内に含まれる物質はまた、前物質、例えば、プロドラッグ、またはpH変化もしくは不安定な結合の酵素切断などの条件下において、1つもしくは複数の変換段階で所望の物質に変換され得る物質であってよい。そのような変換は、薬物リポソームの意図する作用部位においてプロドラッグがリポソーム内部から放出された後に起こり得る。しかし、前物質は、リポソームを送達媒体として使用する前、例えば患者に投与する前に、本発明のリポソーム内で所望の活性物質に変換され得る。例えば、物質は、リポソーム内に容易に充填され、次いで本発明のリポソーム内に入った時点で所望の物質に変換して戻され得るように、前物質に改変され得る。このような方法で、本発明に従って、一般に能動的、遠隔、または他の勾配に基づく充填方法に適していない物質を、元の未改変の形態でリポソーム内に、例えばリポソームの内部空間内に効率的に充填することができる。全体的にカチオン性の化合物、すなわちリポソーム充填条件下において正味の正イオン電荷を獲得し得る化合物、特に滴定可能なアミンを含む化合物は、膜間イオン勾配を示すリポソーム内に効率的に充填されることが知られている。関心対象の物質が有機化合物であり、かつ滴定可能なアミンを有する全体的にカチオン性の化合物でない場合には、例えばWoodleetalのWO9625147に記載されている方法に従って、適切な修飾により、必要なイオン特性を有するその誘導体を調製することができる。例えば、アミノ酸を有する物質のヒドロキシル基をエステル化することで、アミン基を導入することができる。または、リポソーム膜への分割、およびその後のリポソーム内区画、すなわちリポソーム内部へ向けた膜の横断を助けるために、疎水基を水溶性化合物に導入することができる。リポソームに充填可能な前物質を作製するのに有用な別の修飾は、カルボニル基付加化合物、例えばヒドラゾン、オキシム、アセタール、またはケタールの形成である。修飾されたアミノ含有基は、本発明の方法に従ってリポソーム内に修飾化合物が充填された後に、修飾化合物から加水分解され得るか、またはその他の方法で化学的に分割され得る。リポソーム内で前物質から物質を再生する典型的な工程は、加水分解、光分解、放射線分解、チオ開裂、加アンモニア分解、還元、置換、酸化、または除去である。これらの工程は、非限定的に、pH変化によってまたは酵素作用によって達成され得る。例えば、非イオン性物質であるパクリタキセルまたはドセタキセルは、弱塩基である2または7エステルに変換される。非限定的に、能動的、遠隔、膜間勾配に基づく、もしくは溶解度勾配に基づく方法を含む任意の周知の方法、およびまたは本発明の方法によってリポソーム内に充填された後に、リポソーム内の2パクリタキセルは、pH70を超えるpH上昇を通してその加水分解を促進し、本来のパクリタキセルに変換される。このようにして、タキサン分子の親水性共有結合修飾、シクロデキストリンタキサン複合体、またはタキサン可溶化ミセル形成界面活性剤の支援なしに、その内部空間内に中性タキサン分子を封入しているリポソームが、リポソーム脂質のモル当たり005モルを超える薬物脂質比で得られる。本発明に従って、本発明のリポソーム組成物内に含まれるリポソームは、当技術分野において周知であるか、またはより最近発見された任意のリポソームであってよい。一般に、本発明のリポソームは、任意のリポソーム構造、例えば、1つもしくは複数の脂質二重層によって外部の媒体から隔離された内部空間を有する構造、または膜によって内部が隔離されている親油性の中央部分と共に半透性膜を有する任意のマイクロカプセルを有し得る。脂質二重層は、親水性部分および疎水性部分によって特徴づけられる両親媒性分子の任意の配置であってよい。通常、二重層内の両親媒性分子は、疎水性成分がシートの内側を向いて配向し、親水性成分が外側を向いて配向する二次元シートになるよう配置される。本発明のリポソームを形成する両親媒性分子は、任意の周知の、またはより最近発見された両親媒性分子、例えば合成もしくは天然源の脂質または生体適合性脂質であってよい。本発明のリポソームはまた、例えばポリマーソームおよびニオソームのように、両親媒性ポリマーおよび界面活性剤によって形成され得る。本開示の目的上、非限定的に、これらのリポソーム形成材料を脂質とも称する。本発明に従って、本発明のリポソーム組成物内に含まれるリポソームはまた、標的化リポソーム、例えばリポソームの表面上に1つまたは複数の標的化成分または体内分布修飾因子を含むリポソームであってよい。標的化成分は、所望の標的と特異的に結合し得る、または相互作用し得る任意の物質であってよい。1つの態様において、標的化成分はリガンドである。リガンドは、本発明によれば、リポソーム捕捉物質がその所望の効果を発揮する細胞に結合するおよびまたは内部移行することが好ましい。リガンドは通常、第2メンバーが標的細胞上もしくは細胞内、または標的細胞を含む組織内に存在する結合対のメンバーである。本発明に適したリガンドの例は:葉酸、タンパク質、例えば、トランスフェリン、増殖因子、酵素、ペプチド、受容体、抗体、または抗体断片を含む任意の他のポリペプチドなどである。標的化成分が抗体であるかまたはその標的抗原結合断片であるリガンド標的化リポソームは、イムノリポソームと称される。好ましい態様において、標的化成分、例えばリガンドを保有するリポソームは、標的細胞によって内部に取り込まれ得る。さらに別の態様において、標的化成分は、例えば、EGFR、HER2、HER3、HER4、PDGFR、VEGFR、bFGFR、またはIGFR受容体などのチロシンキナーゼ受容体と特異的に相互作用するリガンドである。さらに別の態様において、標的化成分は、増殖因子受容体、血管新生因子受容体、トランスフェリン受容体、細胞接着分子、またはビタミン受容体と特異的に相互作用する。本発明の別の態様に従って、リポソーム組成物内に含まれるリポソームは、本発明の置換アンモニウムおよびまたはポリアニオンの膜間濃度勾配を示す。好ましくは、リポソームの内部内側空間内の濃度の方が高い。さらに、本発明のリポソーム組成物は、本発明の置換アンモニウムおよびまたはポリアニオンによって生成される勾配に加えて、1つまたは複数の膜間勾配を含み得る。例えば、本発明のリポソーム組成物内に含まれるリポソームは、膜間pH勾配、イオン勾配、電気化学ポテンシャル勾配、およびまたは溶解度勾配をさらに含み得る。本発明のさらに別の態様に従って、本発明のリポソーム組成物は、リポソームを含む容器、ならびに任意に、物質を含む容器および説明書を含むキットにて提供され得る。そのような説明書は、任意の媒体、例えば硬調印画紙コピー、電子媒体、または説明書を含むデータベースもしくはウェブサイトへのアクセスを介して提供され得る。本発明のリポソーム膜組成物は、当業者に周知であるか、または当業者によって最近発見された任意の適切な方法によって作製され得る。一般に、様々な脂質成分を用いて本発明のリポソームを作製することができる。脂質成分には、これらに限定されないが、非電荷脂質成分、例えば、コレステロール、セラミド、ジアシルグリセロール、アシル、またはアルキルポリ;中性リン脂質、例えば、ジアシルホスファチジルコリン、スフィンゴミエリン、およびジアシルホスファチジルエタノールアミン、アニオン性脂質、例えば、ジアシルホスファチジルセリン、ジアシルホスファチジルグリセロール、ジアシルホスファチジン酸、カルジオリピン、ジアシルホスファチジルイノシトール、ジアシルグリセロールヘミコハク酸、ジアシルグリセロールヘミグルラテート、コレステリルヘミコハク酸、コレステリルヘミグルタレートなど;ポリマー結合脂質、例えば、Nメトキシジアシルホスファチジルエタノールアミン、ポリジアシルグリセロール、ポリセラミド;ならびにカチオン性脂質、例えば、12ジアシル3トリメチルアンモニウムプロパン、ジメチルジオクタデシルアンモニウムブロミド、および12ジアシルsnグリセロ3エチルホスホコリンが含まれる。これらの脂質のモノアシル置換誘導体、ならびにジアルキルおよびモノアルキル類似体もまた使用可能である。種々の脂質成分は、1つまたは複数の所望の機能を満たす、改変する、または付与するように選択され得る。例えば、リン脂質は主要な小胞形成脂質として使用され得る。コレステロールを含めることは、膜の剛性の維持および薬物漏出の減少に有用である。ポリマー結合脂質は、肝臓および脾臓によるリポソーム排除を減少させることにより循環の寿命を延ばすため、または循環延長効果が存在しない場合、保存期間中の凝集に対するリポソームの安定性を改善するために、リポソーム製剤中に用いられ得る。PEG脂質をリポソーム脂質の1mol以上の量含めると、リポソームの血中循環時間が数倍延長されることが主張されているが、本発明者は驚くべきことに、本発明のリポソームが極めて長時間循環し、リポソーム組成物にPEG脂質を付加しても、仮にあったとしても2倍未満しか循環寿命が延長されないことを見出した。さらに、電荷修飾脂質を使用して、一部のクラスの物質がエンドソーム経路の範囲から逃れるのを促進することにより、リポソーム封入物質のサイトゾルまたは核標的への送達を支持することができる。1つの態様において、本発明のリポソームは、レシチン、コレステロール、および両親媒性ポリマーを含む。本発明のリポソーム中に含まれるレシチンは、天然レシチン、水素化天然レシチン、合成レシチン、12ジステアロイルレシチン、ジパルミトイルレシチン、ジミリストイルレシチン、ジオレオイルレシチン、1ステアロイル2オレオイルレシチン、または1パルミトイル2オレオイルレシチンであってよく、両親媒性ポリマーは、ポリエチレングリコール脂質誘導体、例えば、ポリエチレングリコールホスファチジルエタノールアミン、ポリエチレングリコールジアシルグリセロール、またはポリエチレングリコールセラミド誘導体であってよく、この場合、ポリ部分は約250~約20000、最も一般的には約500~約5000の分子量を有する。別の態様において、本発明のリポソーム中のレシチンとコレステロールの比は、モルで約32である。さらに別の態様において、両親媒性ポリマーは、本発明のリポソーム中のリポソーム形成脂質の少なくとも01モルである。さらに別の態様において、両親媒性ポリマーの量は、本発明のリポソーム中のリポソーム形成脂質の01モル~1モルである。好ましくは、両親媒性ポリマーは中性ポリマー、すなわち薬物充填条件下において正味のイオン電荷がゼロであり、例えばPEGジアシルグリセロール、PEGジアルキルグリセロール、またはPEGセラミドである。イオン的に中性である両親媒性脂質を、全脂質の約57molのPEG脂質含量まで含めると、例えばビノレルビンなどのビンカアルカロイドのリポソーム充填が高効率になるが、アニオン的に荷電したPEGDSPEの場合には、16mol以上のPEG脂質含量で充填効率が著しく減少することが意外にも見出された。さらに別の態様において、本発明のリポソームは、カンプトテシン誘導体、例えばイリノテカンなどのカンプトテシンプロドラッグを含み、例えばモルで約32という比のレシチンおよびコレステロール、ならびにリポソーム形成脂質の少なくとも01モルまたは1未満の量の両親媒性ポリマーからなる。本発明のリポソームは、当技術分野において周知であるか、または知られるようになるであろう任意の方法によって作製され得る。例えば、GGregoriadisLiposomeTechnologyvol131stedition19832ndedition1993CRCPressBocaRatonFLを参照されたい。本発明のリポソーム組成物の作製に適した方法の例には、押し出し、逆相蒸発、超音波処理、溶媒注入、マイクロフルイダイゼーションmicrofluidisation、界面活性剤透析、エーテル注入、および脱水再水和が含まれる。リポソームの大きさは、低圧押し出しに用いられる膜のポアサイズ、もしくはマイクロフルイダイゼーションに利用される流路の圧力および数を調節することによって、または任意の他の適切な方法により調節され得る。1つの態様において、所望の脂質はまず薄膜水和により、またはエタノール注入によって水和され、次いで規定のポアサイズ;最も一般的には005μm、008μm、または01μmの膜を通して押し出すことにより、一定の大きさに作製される。リポソームの内部に本発明の置換アンモニウムおよびまたはポリアニオンを含むリポソーム組成物は、任意の適切な方法、例えば本発明の置換アンモニウムおよびまたはポリアニオンの存在下でリポソームを形成することによって作製され得る。リポソームの外部の置換アンモニウムおよびまたはポリアニオンは、リポソームを形成した後に、または所望の物質を充填もしくは捕捉する前に、除去または希釈され得る。または、本発明の置換アンモニウムおよびまたはポリアニオンを含むリポソーム組成物は、直接イオン交換法を経て、または中間の遊離酸段階を経て作製され得り、本発明の置換アンモニウムの勾配を有する。そのようなリポソームは、アミンまたは揮発性酸を有するその塩を用いて中和され得る。得られたリポソーム溶液は直接使用することもできるし、または必要に応じてその中に含まれている塩を、例えば蒸発および結晶化し、その後の水性媒体への溶解によって除去することもできる。好ましくは、本発明のリポソーム組成物は、置換アンモニウムおよびまたはポリアニオンの膜間濃度勾配を有し、例えば、リポソーム内の置換アンモニウムおよびまたはポリアニオン塩の濃度の方が、リポソームの外部媒体中の置換アンモニウムおよびまたはポリアニオンの濃度よりも高く、通常は少なくとも100倍高い。1つの態様において、リポソーム内の置換アンモニウムおよびまたはポリアニオン塩の濃度は、リポソームの外部媒体中の置換アンモニウムおよびまたはポリアニオン塩の濃度よりも少なくとも100倍高く、置換アンモニウムに基づいて計算したモル濃度で少なくとも約10mM、50mM、01M、02M、05M、06M、07M、または10Mの濃度である。別の態様において、リポソーム内の置換アンモニウムおよびまたはポリアニオン塩の濃度は、リポソームの外部媒体中の置換アンモニウムおよびまたはポリアニオン塩の濃度よりも少なくとも100倍高く、約065Mまたは約10Mという濃度である。さらに、本発明のリポソーム組成物は、通常、充填工程における所望の物質の安定性および高い充填効率の維持と適合するか、またはその維持に役立つpHを外部に有する。例えば、4~7という範囲のpHまたはpH45~65が好ましい。特に、本発明によれば、カンプトテシン化合物の充填は、約40~約70、より好ましくは約pH50~pH65の範囲という外部媒体のpHで最も良好に達成される。ビンカ誘導体の充填は、pH約50~約70、より好ましくはpH約65で最も良好に達成される。本発明に従って、所望の物質は、適切な温度の水性媒体中で所望の物質を本発明のリポソームと共にインキュベートすることによって、リポソーム内に充填または捕捉され得り、適切な温度は、例えば、充填中は成分脂質の相転移温度よりも高い温度であるが、物質の充填後は相転移温度よりも低くする。インキュベーション時間は通常、成分脂質の性質、リポソームに充填する物質、およびインキュベーション温度に基づく。典型的には、数分~数時間のインキュベーション時間で十分である。85を超える、典型的には90を超える高い捕捉効率が達成されるため、通常は捕捉されなかった物質を除去する必要はない。しかしそのような必要がある場合には、例えばサイズ排除クロマトグラフィー、透析、限外濾過、吸着、または沈殿などの種々の手段によって、捕捉されなかった物質を組成物から除去することができる。特にカンプトテシン誘導体またはビンカアルカロイド誘導体などの物質と本発明のリポソームとのインキュベーション中に低いイオン強度を維持し、その後インキュベーションの終了時点でのイオン強度の上昇で、高い充填効率、非捕捉薬物の良好な除去、および凝集に対する良好なリポソーム安定性がもたらされることが予想外にも見出された。典型的には、インキュベーションは、50mMNaClと同等のイオン強度未満、またはより好ましくは30mMNaClと同等のイオン強度未満のイオン強度の、例えば水溶液中で行われる。インキュベーション後、濃縮した塩溶液を添加して、50mMNaClのイオン強度よりも高く、より好ましくは100mMNaClのイオン強度よりも高くなるようイオン強度を上昇させることができる。理論によって縛られないが、本発明者らは、イオン強度の上昇が、リポソームの内部空間内に封入された実質的にすべての物質をそのままにしておきながら、リポソーム膜から物質を解離するのに役立つと仮定する。一般に、物質脂質比、例えば物質の充填によって得られる薬物充填比は、リポソームの内部に捕捉される物質の量、捕捉されている置換アンモニウムおよびまたはポリアニオンの濃度、捕捉される物質の生理化学的特性、ならびに対イオンの種類に依存する。本発明の組成物において、およびまたは本発明の方法によって高い充填効率が達成されるため、リポソーム内に捕捉される物質の物質脂質比は、充填工程に持ち込まれた物質およびリポソームの量に基づいて計算される物質脂質比の80を超える、90を超える、および典型的には95を超える。実際に、事実上100の封入が一般的である。リポソーム内の物質脂質比は、重量比またはモル比の点から特徴づけられ得る。物質脂質比の1つの単位は、以下に例証されるような日常的な計算によって他の単位に変換され得る。本発明のリポソーム内の物質の重量比は典型的には、脂質1mg当たり少なくとも005、01、02、035、05、または少なくとも065mgの物質である。モル比に関しては、本発明による物質脂質比は、リポソーム脂質1モル当たり少なくとも約002~約5、好ましくは少なくとも01~約2、より好ましくは約015~約15モルの薬物である。1つの態様において、物質脂質比、例えばカンプトテシン誘導体の薬物充填比は、少なくとも01、および好ましくは少なくとも02である。別の態様において、物質脂質比、例えば薬物充填量は、リポソーム形成脂質1mg当たり少なくとも約300mgの物質である。さらに別の態様において、物質脂質比、例えば薬物充填量は、リポソーム形成脂質1mg当たり少なくとも約500mgの物質である。驚くべきことに、本発明により、リポソーム脂質1g当たり08mmolを超える物質、リポソーム脂質1g当たり13mmolを超える物質、およびさらにはリポソーム脂質1g当たり17mmolもの多量の物質という薬物脂質比で、例えばイリノテカンなどのカンプトテシン誘導体薬物の安定でありかつほぼ定量的なリポソーム捕捉が提供される。リポソームがリン脂質を含む場合には、リポソームリン脂質のモル単位当たりの薬物の重量、例えばmg薬物mmolリン脂質という単位で物質含量を表すことが簡便である。しかし、当業者であれば、薬物含量は、リポソーム内のリン脂質の存在とは独立した方法で同等に表され得ること、およびさらにリポソーム脂質内容物の単位当たりの薬物のモル量に換算して同等に表され得ることを理解するであろう。例えば、リポソームが3モルの割合のジステアロイルホスファチジルコリン、2モルの割合のコレステロール、および0015モルの割合のポリ誘導体化ジステアロイルホスファチジルエタノールアミンを含み、かつ150mgmmolリン脂質という薬物脂質比で薬物ドキソルビシンを含む場合、同じ薬物含量は以下のようにmg薬物mg総脂質に換算して同等に表され得る。リポソームリン脂質の総モル量で成分のモル量を割って、リポソームリン脂質のモル単位に対して標準化されたリポソーム脂質成分のモル量を計算する。DSPC3099502コレステロール2066335PGDSPE0015000498リポソームリン脂質の単位モル量および成分分子量に対応する総リポソーム脂質の質量を計算する。mg総脂質mmolリン脂質099502x790066335x387000498x2750105648リン脂質のモル単位当たりの質量単位で表された薬物含量を段階で得られた数値で割って、総脂質の質量単位当たりの薬物の質量を計算する。mgドキソルビシンmg総脂質150105648014198段階で得られた数値を薬物分子量で割って、総脂質の単位質量当たりの薬物のモル量を計算する。mmolドキソルビシンg総脂質0141985435x10000261リポソーム脂質マトリックス中のリン脂質のモルの割合を計算する。リン脂質のモルの割合06012総脂質に対するドキソルビシンのモル比を計算する。molドキソルビシンmol総脂質x06012x15054350166このように、様々な単位で表される薬物脂質比と薬物リン脂質比の間の関係が容易に確立される。本明細書で用いる脂質には、非限定的に、例えばポリマーおよびまたは界面活性剤などの、リポソーム膜の任意の膜形成成分が含まれる。本発明のリポソームに捕捉された置換アンモニウムおよびまたはポリアニオン塩溶液は、通常、リポソームの充填能を犠牲にすることなく、浸透圧損傷に対してリポソームを安定に保つのに役立つ浸透力を有する。1つの態様において、本発明のリポソーム組成物のモル浸透圧は、01~15molkg、または好ましくは02~10molkgの範囲にある。驚くべきことに、本発明者らは、本発明のリポソームが、薬物充填に及ぼす高いリポソーム内浸透力の悪影響に対して安定であることを見出した。0727molkgもの高いリポソーム内浸透圧が十分に許容され、その結果、薬物およびリポソームを同時にインキュベーションする際のリポソーム外水性媒体の浸透圧が約03molkgという生理的値にたとえ近くとも、リポソーム内置換アンモニウムイオンの薬物分子との化学量論的交換の理論的最大値まで、事実上定量的な薬物の充填がもたらされる。一般に、本発明のリポソーム組成物は、例えば、本発明のリポソームの内部に物質が最初に充填されてから一定期間後の、リポソームの外部に放出された、またはリポソームの内部に依然として維持されている捕捉物質の割合によって表されるように、保存期間中に極めて安定である。本発明のリポソーム組成物は4°Cで少なくとも6ヶ月間安定であり、例えば物質の最初の充填から6ヵ月後、放出された捕捉物質は10に満たない。1つの態様において、本発明のリポソーム組成物は4°Cで少なくとも2年間安定であり、例えば物質の最初の充填から2年後、放出された捕捉物質は20に満たない。リポソーム捕捉物質は、リポソームがその意図する作用部位に到達するまでリポソーム内に封入されたままであることが有利である。本発明のリポソームは、インビボ条件下で、例えば哺乳動物の血中で、捕捉物質の放出に対して驚くべき安定性を示した。インビボにおけるラットの血中で、リポソームから捕捉物質が50放出されるのに必要な曝露時間は、24時間を超えた。特に、ビンカアルカロイド薬物を充填したリポソームは、少なくとも24時間の半放出時間を有して、またはインビボにおける血中で24時間後に封入されたままである物質の量が投与前の値の少なくとも約50であり、インビボでの薬物漏出に対して顕著な安定性を示した。典型的には、33時間を超える半放出時間、またはインビボにおける血中で24時間後に封入されたままである封入物質の量が少なくとも約60であることが認められ;さらに46時間を超える半放出時間、またはインビボにおける血中での24時間後の封入物質の量が投与前の値の約70であることも一般的であった。場合によっては、インビボにおける血中の封入薬物の半放出時間は93時間を超え、さらには120時間を超えた。トポテカンなどのカンプトテシン誘導体を充填したリポソームもまた、元の薬物充填量の79~85が24時間後に封入されたままであり、血中における並外れたインビボ安定性を示した。顕著なことには、本発明のリポソームは、血中循環においてそのように低いインビボ薬物放出速度を有するが、遊離薬物の活性に勝る実質的なインビボ抗腫瘍活性を示した。本発明のリポソームにより、治療用物質の高効率の捕捉および低毒性の予期せぬ組み合わせが提供された。一般に、本発明によるリポソームに封入された治療用物質の活性、例えば哺乳動物におけるカンプトテシン誘導体の抗新生物活性は、例えば本発明のリポソーム組成物を用いずに、その日常的な非リポソーム製剤によって同量を投与した場合の治療用物質の活性と少なくとも同等であるか、その活性よりも少なくとも2倍高いか、または少なくとも4倍高いが、リポソームに封入された物質の毒性は、同じ用量およびスケジュールで、しかし遊離の非封入形態で投与された同じ治療用物質の毒性を超えないか、その毒性よりも少なくとも2倍、少なくとも3倍、または少なくとも4倍低い。例えば、他の研究者らが公表している方法による抗癌カンプトテシン誘導体のリポソーム封入は、非封入薬物と比較して毒性の増加をもたらすことが一般に知られている。米国特許第6355268号;米国特許第6465008号;ColbernetalClinicalCancerRes1998v4p30773082;TardietalCancerRes2000v60p33893393;EmersonetalClinicalCancerRes2000v6p29032912を参照されたい。リポソームに封入された、水溶性でありカチオン性のカンプトテシンプロドラッグ誘導体であるイリノテカンなどのカンプトテシンプロドラッグは、例えば遊離形態の、リポソーム製剤の非存在下の薬物よりも実質的に高い、例えば少なくとも4倍、さらには10倍高い、インビボ腫瘍モデルで評価される抗腫瘍活性を有する。このことは、治療化合物、例えばカンプトテシンプロドラッグは、例えば内因性の非特異的カルボキシルエステラーゼの作用による酵素的活性化を必要とするが、本発明に従ってリポソームの内部空間内に実質的に封入されていることから、さらに注目に値する。一方、驚くべきことに、本発明によるリポソーム形態をしたCPT11などのカンプトテシンプロドラッグの毒性は、遊離プロドラッグCPT11の毒性よりも2倍を超えて、3倍を超えて、さらには4倍を超えて低い。さらに、血流に投与されてから24時間後に元の薬物含量の50を超える、さらには70を超える含量がリポソーム内に依然として維持され、また24時間を超える、典型的には48時間を越える半放出時間を有して、インビボにおけるCPT11リポソームからの薬物放出の長期化が達成された。インビボにおけるリポソーム内の薬物残存の長期化は、抗腫瘍効果の上昇と関連した。驚くべきことに、最も遅いインビボCPT11放出および最も高い抗腫瘍活性は、高分子アニオンよりもむしろ、低分子ポリアニオン化糖誘導体を含むリポソームで認められた。本発明の別の態様に従って、本発明のリポソーム組成物は、本発明のリポソーム組成物および担体を含む薬学的組成物として提供され得る。薬学的に許容される担体の例は、通常の生理食塩水、等張デキストロース、等張スクロース、リンゲル液、およびハンクス液である。保存安定性に最適なpHを提供するよう、緩衝物質が添加され得る。例えば、約60~約75のpH、より好ましくはpH約65が、リポソーム膜脂質の安定性に最適であり、捕捉物質の良好な保持を提供する。典型的に2~20mM濃度のヒスチジン、ヒドロキシエチルピペラジンエチルスルホン酸、モルフォリポエチルスルホン酸、コハク酸、酒石酸、およびクエン酸は、例示的な緩衝物質である。他の適切な担体には、例えば、水、緩衝水溶液、04NaCl、03グリシンなどが含まれる。例えばゼラチン、アルブミン、デキストラン、またはポリビニルピロリドンなどのタンパク質、炭水化物、または高分子安定剤および張度調整剤も添加され得る。組成物の張度は、グルコースまたはより不活性な化合物を用いて、025~035molkgという生理的レベルに調節され得る。これらの組成物は、従来の周知の滅菌法により、例えば濾過により滅菌され得る。得られた水溶液は、使用のために包装され得るか、または無菌条件下で濾過されて凍結乾燥され得り、凍結乾燥調製品は投与前に無菌水性媒体と混合される。薬学的リポソーム組成物はまた、pH調整剤および緩衝剤、張度調整剤などのような、生理的条件に近づけるために必要な他の薬学的に許容される補助剤を含み得る。さらに、リポソーム懸濁液は、保存の際にフリーラジカル損傷および脂質過酸化損傷から脂質を保護する脂質保護剤を含み得る。αトコフェロールなどのフリーラジカル失活剤、およびフェリオキサミンなどの水溶性鉄特異的キレート剤が適している。液体薬学的製剤中の本発明のリポソームの濃度は、大きく異なり得り、選択した特定の投与形態に従って、主に液量、粘度などにより選択されることになる。例えば、治療に付随する液量を減らすために濃度を高めることができる。これは、アテローム性動脈硬化関連うっ血性心不全または重症高血圧を有する患者において特に好ましいと考えられる。または、刺激性脂質から構成されるリポソーム薬学的組成物は、投与部位における炎症を軽減するために、低濃度になるよう希釈することができる。投与するリポソーム薬学的組成物の量は、リポソームの内部に捕捉されている特定の治療用物質、治療する疾患状態、使用するリポソームの種類、および臨床医の判断に依存することになる。一般に、投与するリポソーム薬学的組成物の量は、特定の治療用物質の治療的有効量を送達するのに十分である。治療的有効量を送達するために必要なリポソーム薬学的組成物の量は、薬物試験の分野において一般的である日常的なインビトロおよびインビボ方法によって決定され得る。例えば、DBBudmanAHCalvertEKRowinskyHandbookofAnticancerDrugDevelopmentLWW2003を参照されたい。様々な治療用物質の治療的有効量は当業者に周知であり;本発明によれば、本発明の薬学的リポソーム組成物によって送達される治療用物質により、その日常的な非リポソーム製剤で同量の治療用物質を投与することによって得られる活性と少なくとも同等であるか、またはその活性よりも2倍、4倍、もしくは10倍高い活性が提供される。典型的には、本発明のリポソーム薬学的組成物の投与量は、治療用物質約0005~約500mgキログラム体重、より頻繁には治療用物質約01~約100mgkg体重の範囲である。典型的には、本発明のリポソーム薬学的組成物は、液体溶液または懸濁液のいずれかの局所剤または注射剤として調製される。しかし、注射前に液体溶媒で溶液または懸濁液とするのに適した固体形態もまた調製され得る。組成物はまた、当技術分野で周知の方法に従って、腸溶性錠剤またはゲルカプセルに製剤化され得る。本発明のリポソーム組成物は、治療する状態または損傷に依存し得る、医学的に許容される任意の方法によって投与され得る。可能な投与経路には、筋肉内、皮下、静脈内、動脈内、腹腔内、関節内、硬膜外内、くも膜下腔内、またはその他のような非経口経路による注射、および経口、経鼻、点眼、経直腸、腟内、局所、または経肺が含まれる。本発明に従って製剤化されたリポソーム薬物を中枢神経系の腫瘍に送達するには、腫瘍へのリポソームの直接的な緩徐型徐放性頭蓋内注入が特に有利である。SaitoetalCancerReseearchvol64p257225792004;MamotetalJNeuroOncologyvol68p192004を参照されたい。組成物はまた、組織表面に直接適用され得る。例えば蓄積注射または侵食性埋込錠のような手段による、徐放投与、pH依存的放出投与、または他の特定の化学的条件もしくは環境条件による放出投与もまた、本発明に明確に含まれる。以下の実施例は、本発明を任意の方法、形状、または形態で明確にまたは暗黙に例証することを意図するものであって、限定することを意図していない。これらは、使用することができる典型的なものであるが、当業者に周知である他の手順、方法、または技法を使用することも可能である。実施例1置換アンモニウム塩溶液の調製薬物をリポソーム内に充填するのに有用な硫酸トリアルキルアンモニウムおよび硫酸ジアルキルアンモニウム溶液を、硫酸を025Mの濃度になるよう水で希釈し、次いで種々のアミンのうちの1つで硫酸溶液を滴定することによって調製した。本実施例で使用した置換アミンは、トリエチルアミン、トリメチルアミン、ジメチルアミン、ジエチルアミン、またはジエタノールアミンであった。アミンを添加した後、得られた溶液を最終濃度02Mの置換アンモニウム塩になるよう希釈した。露点浸透圧計を用いて、モル浸透圧を測定した。得られた置換アルキルアンモニウム硫酸塩溶液の特性を以下の表1に示す。表1種々の硫酸ジアルキルアンモニウムおよび硫酸トリアルキルアンモニ溶液の特性実施例2ジアルキルアンモニウムおよびトリアルキルアンモニウム塩を捕捉したリポソームの調製、ならびにこれらのリポソーム内への物質の充填ジステアロイルホスファチジルコリン、コレステロール、およびNオキシカルボニルジステアロイルホスファチジルエタノールアミンから調製を320015のモル比でクロロホルム中に共溶解し、回転蒸発により55~60°Cでクロロホルムを除去した。次いで、実施例1に記載した各硫酸ジアルキルアンモニウムまたは硫酸トリアルキルアンモニウムのうちの1つの溶液中で、乾燥脂質フィルムを60°Cで30分間水和させた。脂質懸濁液を、ポアサイズ01μmを有する2枚重ねポリカーボネートトラックエッチ膜フィルターを通して、加圧下で押し出した。準弾性光散乱により測定したリポソームの大きさは約110~120nmであった。架橋デキストランゲルカラムを使用し、HEPES緩衝生理食塩水、pH72~74で溶出してゲル濾過することによって、封入されなかったトリアルキルアンモニウムまたはジアルキルアンモニウム塩をリポソームの外部媒体から除去し、リポソームをカラムの空隙容量画分中に回収した。塩酸ドキソルビシンUSPを、150μg薬物μmolリポソームリン脂質の濃度でリポソームに添加した。混合物を55°Cで45分間インキュベートし、氷上で10分間冷却し、次いでSephadexG75カラムを使用してHEPES緩衝生理食塩水、pH74で溶出するゲル濾過クロマトグラフィーにより、封入されなかった薬物を除去した。遊離ドキソルビシンの存在は視覚的に検出されなかった。精製されたドキソルビシン充填リポソームを、リン脂質およびドキソルビシンについてそれぞれ実施例70および71に従って解析した。結果として得られた薬物充填効率を表2に示す。表2ジアルキルアンモニウムおよびトリアルキルアンモニウム塩溶液を捕捉しているリポソーム内へのドキソルビシンの充填インプット薬物リン脂質比150μgμmol実施例3様々なジアルキル、トリアルキル、および複素環置換アンモニウム硫酸塩を含むリポソームの調製、ならびにこれらのリポソーム内へのドキソルビシンの充填市販のアルキル置換、ヒドロキシアルキル置換、および複素環アミンを使用して、実施例1のように置換アンモニウム硫酸塩溶液を調製した。リポソームは、脂質フィルム水和段階の代わりに、ストレートの脂質をエタノール中に溶解し、生成される脂質分散液が約10容量のエタノールを含むように置換アンモニウム塩溶液と60~65°Cで混合すること以外は、実施例1の通りに形成した。ドキソルビシンの充填は、155μg薬物μmolリポソームリン脂質の比率でドキソルビシン溶液をリポソームに添加し、湯浴中で58°Cで45分間加熱することによって達成した。得られたリポソームは、実施例1の通りに、残存する非封入ドキソルビシンから分離し、薬物および脂質含量について解析した。結果を表3に示す。表3立体障害型の置換アルキル、ジアルキル、トリアルキル、および複素環アンモニウム塩溶液を捕捉しているリポソーム内へのドキソルビシンの充填実施例4ポリリン酸トリエチルアンモニウム溶液の調製1分子当たり13~18のリン酸単位を有する線状ポリナトリウム、SigmaChemicalCompanyから入手を、約13Mリン酸の濃度になるよう水に希釈した。120mLの水素型のスルホン酸化ポリスチレンジビニルベンゼン共重合体カチオン交換樹脂ビーズが充填されたカラムに、この溶液を通した。カラムは樹脂を水素型にするために3~36MHCl水溶液で予め平衡化し、脱イオン水で中性pHになるまで洗浄した。ポリリン酸ナトリウム溶液15mlをカラムに供し、脱イオンH2Oで溶出した。伝導度検出器を用いて、カラム溶離液をモニターした。伝導度ピークに相当するカラム流出物を、ストレートのトリエチルアミンでpH55~60になるまで滴定した。溶液を、ナトリウム感受性ガラス電極を用いる電位差測定法により残存するナトリウムに関して、および実施例1におけるような無機リン酸アッセイを用いてリン酸含量について解析した。1未満の残存ナトリウム含量を有する溶液を、最終リン酸濃度055Mになるよう希釈した。溶液は典型的には、TEA濃度052~055M、pH55~60、およびモル浸透圧430~480mmolkgを有する。実施例5リポソーム調製物からの非捕捉ポリリン酸塩の除去KirpotinetalBiochemistry3666751997に従って、蛍光マーカー8ヒドロキシピレントリスルホン酸を捕捉するリポソームを調製し、ポリリン酸ナトリウム溶液と混合した。混合物を、架橋デキストランビーズ、6アガロースビーズ、または4アガロースビーズを含むサイズ排除カラムに添加し、MESデキストロース緩衝液で溶出した。溶出液を、Bartlettのリン酸アッセイを用いてリン酸含量について、および分光蛍光法によってリポソーム含量について解析した。検討したゲルクロマトグラフィー担体のうち、SepharoseCL6Bが、試料カラム総容積比13でリポソームからのポリリン酸の完全な分離を提供した。実施例6スクロース8硫酸トリエチルアンモニウム溶液の調製スクロース8硫酸ナトリウムは、すべてのヒドロキシル基が硫酸エステルを形成しているスクロース誘導体のナトリウム塩である。スクロース8硫酸ナトリウム塩は、TorontoResearchChemicals、カナダ、トロントから購入した。最終濃度約25Nの硫酸基が生じるよう、スクロース8硫酸ナトリウム6グラムを脱イオン水1657mlに溶解した。この溶液を、実施例4の通りにイオン交換によって処理した。次いで、イオン交換カラム流出液として得られたスクロース8硫酸溶液を、ストレートのトリエチルアミンでpH57になるまで滴定し、溶液のpHおよびモル浸透圧を測定した。得られた溶液は、計算上のトリエチルアンモニウム濃度0643M、pH57、およびモル浸透圧530mmolkgを有した。残存ナトリウムの存在は、電位差測定法によって検出されなかった。実施例7置換アンモニウム塩を用いてイリノテカンを充填したリポソーム:調製、および血漿存在下におけるインビトロ薬物放出本実施例では、硫酸、クエン酸、ピロリン酸、三リン酸、および線状ポリリン酸を、リポソームに捕捉される置換アンモニウム塩溶液中のアニオンとして検討した。リン酸ポリマーは、生分解性であることから、またポリリン酸が他の合成高分子アニオンとは対照的に細胞中に天然に見出されることから、選択した。また、低分子量ポリリン酸の粘度は他のポリマーの粘度よりも低く、ポリリン酸をより加工しやすくした。以下の材料を塩溶液の調製に使用した。1ポリリン酸ナトリウム、NaOPO3NanNa、n13~18、Sigmaから購入;2トリポリリン酸5ナトリウム、Na5P3O10、Sigmaから購入;3ピロリン酸4ナトリウム十水和物、Na4P2O710H2O、Sigmaから購入;4Sigmaから購入したイオン交換樹脂Dowex50Wx4またはSigmaから購入したイオン交換樹脂DowexHCRW2を互換的に使用した。樹脂は以下の順でデカンテーションにより洗浄した:脱イオン水で3回、1NHClで2回、水で3回、1NNaOHで2回、水で3回、1NHClで3回、および水で3回。デカンテーション後、樹脂はH型であった。5トリメチルアミン、水溶液40、AldrichChemicalCoによる。濃度は、酸滴定によって約59Nであると確証された。6トリエチルアミン、99、HPLC等級、Fisherによる。酸滴定による濃度は69~71Nであった。水は逆浸透、イオン交換、および有機物除去によって精製し、有機物フリー16~18Mオーム品質を達成した。ピロリン酸、三リン酸、およびポリリン酸塩の水溶液を、イオン交換法によって調製した。ポリリン酸ナトリウム、ピロリン酸ナトリウム、またはポリリン酸ナトリウムを、上記のように調製したイオン交換樹脂100mLを含むカラムに添加した。カラムを水で溶出し、画分を回収した。酸性pHを示す画分をプールした。リン酸を含むプール画分の05mL分割量を三つ組にて、水20mLで希釈し、pH45~50の終点まで0100NNaOHで滴定し、規定度を決定した。イオン交換後のプール画分を、トリメチルアミンでpH54~55になるまで滴定した。滴定後、溶液を必要に応じて希釈して、05Nに近い最終濃度のトリメチルアンモニウムを得た。硫酸トリメチルアンモニウムおよび硫酸トリエチルアンモニウムは、濃硫酸139mLを水80mLで希釈し、pHメーターの管理下でこの希釈溶液をストレートのトリエチルアミンまたはトリエチルアミン水溶液で当量点になるまで滴定することによって調製した。容量が100mLになるように水で調整した。クエン酸トリメチルアンモニウム溶液は、Sigmaによるクエン酸一水和物ACS1572gを水20mLに溶解し、この溶液をトリメチルアミン水溶液で当量点になるまで滴定することによって調製した。容量が25mLになるように水で調整した。溶液は、陽圧により02μm酢酸セルロースフィルターを通して濾過した。溶液のモル浸透圧およびpHを、それぞれ蒸気圧浸透圧計およびガラスカロメル電極pHメーターを用いて測定した。リン酸溶液中のアニオンの規定度は、酸加水分解後に、青色リンモリブデン酸分光光度アッセイにより決定した。アニオン規定度は、pH55で実質的にイオン化される酸性機能基のみを考慮に入れた。カチオン規定度は、添加したトリアルキルアンモニウム塩基に基づいて決定した。得られた溶液は以下の特性を有した。表4リポソーム内にCPT11を充填するための置換アンモニウム塩溶液の特性コレステロールおよびDSPCは、AvantiPolarLipids、米国、アラバマ州、アラバスターから購入した。PEGDSPEは、ShearwaterPolymers、米国、アラバマ州、ハンツビルによる。重量比3101のDSPC、コレステロール、およびPEGDSPEを、60mgmLDSPCでクロロホルムに溶解した。チューブ当たりDSPC30mgで溶液をPyrexチューブに分注し、回転蒸発器を用いて減圧にて、60°Cでゆっくりと蒸発させた。脂質フィルムを、室温で30~60分間、真空下で乾燥させた。乾燥脂質フィルムを、上記の塩水溶液中で60°Cで15~20分間穏やかに振盪することにより水和させた。脂質は乳状の懸濁液を形成した。この乳状懸濁液を、5サイクルの、ドライアイスおよびイソプロパノール混合物中での凍結、ならびに60°Cの水浴中での3分間の融解に供した。次いで、60°Cに加熱した手動操作往復押し出し機を用いて、脂質懸濁液を、2枚重ねポリカーボネート膜フィルターを通して10回押し出した。押し出されたリポソームは60°Cで5分間保持し、氷水中で5分間急冷した。次いで、SephadexG75でのゲルクロマトグラフィーにより、リポソームを、勾配形成塩溶液から充填緩衝液MESデキストロースエタンスルホン酸、およびpHを64にするための十分量の5MNaOH中に分離した。リポソームは空隙容量画分に出現する。固体1mg当たりCPT11塩基0860mgを含むCPT11調製物を、0001NHClに溶解して、165mgmLCPT11塩基という保存溶液を作製した。この溶液を、リポソームリン脂質1μmol当たり150μgCPT11という比率になるよう、MESデキストロース緩衝液中のリポソームと混合した。混合物を水浴中で時々穏やかに撹拌しながら55°Cで30分間インキュベートし、次いで氷水中で急冷した。MESデキストロースを溶離液として使用して、SephadexG75でのゲルクロマトグラフィーにより、リポソームを非封入薬物から分離した。分光光度アッセイにより封入薬物を測定し、抽出アッセイを用いてリン脂質を測定した。このようにして得られたCPT11充填リポソームからの、50ヒト血漿の存在下におけるインビトロ薬物放出を、以下のように調べた。凍結ヒトドナー血漿を37°Cで融解し、14500gで10分間遠心分離し、次いで045μm酢酸セルロースシリンジフィルターを通して濾過した。CPT11を充填したリポソーム調製物は、02μm界面活性剤フリー酢酸セルロース滅菌シリンジフィルターを通して滅菌した。滅菌15mL共重合体Eppendorfチューブ中で、リポソーム05mLを血漿05mLと混合し、密封し、振動プラットホーム上で37°Cで24時間インキュベートした。空試料は、リポソームの代わりに滅菌MESデキストロース05mLを含んだ。144mMNaCl、5mMHEPESNa、pH74緩衝液を用いるビーズ架橋2アガロースゲルでのゲルクロマトグラフィーにより、リポソームを単離した。リポソームは空隙容量画分に出現するのに対し、血漿タンパク質および放出された薬物はゲルによって遅延された。リポソーム画分をCPT11およびリン脂質について解析し、薬物リン脂質比を決定した。空試料の読み取り値を、リポソーム含有試料の読み取り値から減算した。アウトプット薬物脂質比をインプット薬物脂質比で割って、インキュベーション後にリポソーム中に残存する薬物の割合を決定した。充填および放出データを表5に要約する。表5第三級アルキルアンモニウム塩を用いたCPT11のリポソーム内への充填、およびヒト血漿の存在下における薬物のインビトロ放出実施例8ピロリン酸、三リン酸、ポリリン酸、クエン酸、および硫酸トリアルキルアンモニウム塩を用いてCPT11を充填したリポソームのインビボ安定性カンプトテシンリポソームはインビトロにおいて血漿中への許容可能な薬物漏出を示し得るが、薬物はインビボにおいてより迅速に血液循環中に漏出する可能性がある。したがって、マウスにおいて単一時点アッセイを用いることで、一連のCPT11リポソーム製剤を、インビボにおける血液循環中の薬物安定性に関してスクリーニングした。以下の変更を加えて、実施例6に記載した通りにリポソームを調製し、CPT11を充填した。ShearwaterPolymersのPEGDSPEを使用する代わりに、AvantiPolarLipidsによる同様のPEGDSPEを使用した。血液組織試料中のリポソーム脂質マトリックスの定量化を提供するため、非交換性放射性標識、3Hコレステリルへキサデシルエーテルを、025mCimmolリン脂質の量で脂質のクロロホルム溶液に添加した。脂質溶液をDSPC12mgチューブでPyrexチューブに分注し、回転蒸発真空乾燥により脂質フィルムを形成した。脂質フィルムを、勾配形成置換アンモニウム塩溶液07mL中で水和させた。リン酸含有塩を捕捉したリポソーム中の脂質濃度は、放射能シンチレーション計数により決定した。リン酸含有塩を捕捉していない調製物はまた、実施例70に記載される通りに抽出なしでリン脂質に関してアッセイし、脂質放射能標準物質として使用した。充填のために調製したリポソーム薬物混合物の一部を確保しておき、充填する前の、添加したCPT11とリポソーム脂質の充填前比を確認するためにアッセイした。リポソームの大きさの分布の体積平均化平均値および標準偏差は、ガウスモデルを用いて準弾性光散乱により決定した。これらのリポソームの特性を表6に要約する。表6インビボ安定性試験用の3HCHE標識リポソーム内へのCPT11充填の特徴づけ6週齢雌CD1マウスに、二つ組で、これらのリポソームCPT11製剤を10mgkg用量で尾静脈注射した。8時間後、マウスに麻酔をかけ、心臓切開穿刺によりマウスを放血させた。血液をヘパリン化シリンジ中に回収し、004EDTAを含むリン酸緩衝生理食塩水04mlを含む秤量済みのチューブに移し、氷上で保持した。チューブを秤量して血液試料の重量を決定し、9000gで5分間の遠心分離によって血液細胞を分離し、PBS希釈血漿を含む上清を、薬物およびリポソーム脂質アッセイのために保存した。CPT11は、蛍光分析アッセイにより定量化した。リポソーム脂質は、消光補正した放射能シンチレーション計数により定量化した。リポソームおよびリン脂質放射能標準物質を、血漿試料と平行して計数した。注射したリポソームの薬物放射能比で血漿試料中の薬物放射能比を割ることで、封入されたままの薬物の割合を計算した。遊離CPT11は血液から即座に排除され、また3HCHEは脂質交換に対して安定であることが周知であることから、アッセイの読み取り値はリポソームCPT11および脂質の血中含量を示すと見なされた。注射したボーラスの100が循環に入った;血液量はマウス体重の63である、およびヘマトクリット値が45であると仮定して、循環中に残存している、注射した脂質用量に対する割合を計算した。結果を表7に要約する。表7マウスにおける注射後単一時点での、CPT11封入のインビボ安定性およびCPT11充填リポソームの循環寿命ID、注射した用量のすべての調製物が、注射前レベルの70~80という、インビボにおける血中での8時間後の薬物封入レベルを示したが、ポリリン酸を含むリポソームが最も安定であった。実施例9ポリリン酸リエチルアンモニウムを用いて調製したCPT11リポソームの血中薬物動態トリエチルアンモニウムポリリン酸塩を用いたリポソームCPT11製剤を、実施例3に概説したように調製した。脂質‐DSPC、コレステロール、およびNオキシカルボニルDSPE-を乾燥粉末としてモル比320015で混合し、100エタノールに62~65°Cで溶解した。薬物動態研究のため、3Hコレステリルへキサデシルエーテルを、非交換性放射性脂質標識として、05mCimmolリン脂質の量で脂質に添加した。TEAPnの水溶液を実施例4の通りに調製した。TEAPn溶液を脂質溶液と60~65°Cで混合し、多重膜小胞の均一な乳状懸濁液が形成されるまでこの温度で撹拌した。この懸濁液を、アルゴン圧押し出し機を用いて、60~65°Cで、ポアサイズ100nmを有する2枚重ねポリカーボネートトラックエッチフィルターを通して15回押し出し、得られた単層リポソームを氷中で急冷し、その後外界温度に到達させた。エタノールおよび取り込まれなかったポリリン酸塩は、SepharoseCL4BカラムにてMESデキストロース緩衝液で溶出するゲルクロマトグラフィーによって除去した。水中に20mgmLイリノテカン塩基を含むCPT11の保存溶液を、150~200mgmmolリン脂質の薬物脂質比でリポソームに添加し、混合物を時々撹拌ながら60~62°Cで45~60分間インキュベートした。インキュベーション混合物を急冷し、0°Cで10分間インキュベートし、次いで外界温度に到達させた。生理的イオン強度に調整し、また膜結合CPT11の除去を改善するために、120量の288MNaClを添加した。SephadexG25またはG75カラムにてHBS65緩衝液ピペラジノエチルスルホン酸、144mMNaCl、pH65で溶出するゲルクロマトグラフィーにより、封入されなかった薬物を除去した。空隙容量に溶出されたリポソーム画分を混合し、02ミクロン濾過によって滅菌し、使用するまで4~6°Cで保存した。リポソームは、実施例7の通りに、脂質濃度、薬物濃度、および粒径によって特徴づけた。リポソームは、平均の大きさ108nm、および139±18mgCPT11塩基mmolリン脂質というCPT11含量を有した。血中のリポソーム脂質およびリポソーム薬物の寿命、ならびにインビボにおけるリポソームからの薬物放出の特徴を、中心静脈カテーテルを留置した雌SpragueDawleyラットで試験した。3HCHE標識イリノテカンリポソームの02~03mLボーラスをラットに注射した。血液試料02~03mLを、ヘパリン処理シリンジを用いて、注射後様々な時点で採取した。リン酸緩衝生理食塩水を用いて、採取した血液量に補充した。血液試料を004EDTAを含む氷冷PBS03mlで希釈し、秤量し、遠心分離によって血液細胞を分離した。上清液を回収し、実施例71の蛍光分析手順を用いてCPT11に関して、および従来法を用いてシンチレーション放射能計数によりリポソーム脂質標識に関してアッセイした。既知の薬物および3HCHE脂質濃度を有するリポソーム調製物を、標準物質として使用した。放射能標準物質は、消光を明らかにするために等量の希釈ラット血漿を含む。血液量は体重の65、およびヘマトクリット値は40と仮定して、血中のCPT11およびリポソーム脂質の量を計算した。注射した用量のとして血中の脂質および薬物の総量を表し、注射後の時間に対してこれをプロットした。リポソーム中に残存している薬物の割合は、注射したリポソームの薬物脂質比で血液試料中の薬物脂質比を割って計算した。プロットは一般に、単一指数関数的速度論との良好な一致を示したため、薬物、脂質、およびリポソームからの薬物放出の血中半減期は、MicrosoftEXCELコンピュータプログラムのTRENDオプションを使用して、単一指数関数的減衰方程式へのデータの最良適合から計算した。結果を図1に示す。最良適合パラメータから、脂質および薬物の血中半減期は、それぞれ164時間および661時間であった。これらの条件下では、遊離のCPT11は循環から非常に迅速に排除される。血中薬物脂質比から、リポソームからのCPT11放出の二相性特性が明らかになった。最初の24時間では、追跡した薬物放出は時間に対して線形であり、ゼロ次放出速度論の証拠が提供された。24時間の時点で薬物の約75が放出されて初めて、さらなる放出は線形ではなくなった。24時間の間、リポソームは最初の充填量の約36時間という一定速度で薬物を放出した。したがって、薬物の50が約14時間の期間をかけて放出された。薬物のゼロ次放出は、薬物放出の速度が時間に対して一定のままであるため、持続性製剤における魅力的な性質である。実施例10ポリリン酸トリエチルアンモニウムを用いて調製したCPT11リポソームのヌードマウスにおける乳癌異種移植片に対する抗腫瘍効果CPT11リポソームの抗腫瘍効果を、CErbB2受容体を過剰発現するエストロゲン依存性乳管腺癌であるヒト乳癌BT474のモデルにおいて試験した。BT474は、アメリカンタイプカルチャーコレクションから入手した。より高い腫瘍増殖速度を有するBT474亜株を、以下に記載するように産生させた急成長する異種移植片腫瘍小結節から確立した。細胞は、T150フラスコ中、10ウシ胎児血清、01mgmL硫酸ストレプトマイシン、および100UmlペニシリンGを添加したRPMI1640培地でインビトロで増殖させ、毎週13に分割した。NCRnunu雌マウスに、60日徐放性072mg17βエストラジオール埋込錠を皮下移植し、2日後、細胞増殖培地中に2x107BT474細胞を含む01mL懸濁液をこのマウスの背上部に皮下接種した。週に2回、触診、ならびに最長軸および最短軸に沿った腫瘍のノギス測定によって、腫瘍増殖をモニターした。以下の式を用いて、週に2回、ノギス測定値から腫瘍の大きさを決定した。腫瘍体積x22接種後13日目に、腫瘍は平均の大きさが200mm3に達し、動物を13~15匹の3つの群にランダムに割り当てた。リポソームCPT11を実施例8の通りに調製した。いずれの群も有意な毒性を示さなかった。対照群の動物の体重は、一貫して増加していた。リポソームCPT11を与えた動物の平均体重に、最後の処置の日に約33というわずかな減少が見られた。しかし、この体重減少は回復し、動物はその予想体重に到達した。平均体重のこの減少は、処置前の体重と比較したスチューデントのt検定により、統計的に有意ではなかった。したがって、すべての処置が有意な毒性なしに許容された。このように、予め捕捉されたポリアニオン性生分解性ポリマーの立体障害置換アンモニウム塩を介して薬物を充填することにより得られたCPT11のリポソーム製剤は、毒性の明らかな増加なしに、血中寿命の延長、徐放特性、および試験した腫瘍モデルにおける抗腫瘍活性の増加を示した。実施例11予め捕捉されたトリエチルアンモニウム塩を用いて調製したCPT11充填リポソームの比較評価:リポソームの大きさ、薬物脂質比、および予め捕捉されたアニオンの性質の影響一方は予めTEAPnを捕捉したリポソーム、およびもう一方は予めTEASOSを捕捉したリポソームを用いて、CPT11充填リポソームの2つの原型製剤を調製した。これらのリポソームの調製は、以下の製造段階を含んだ。1エタノール中に共溶解することによる脂質の混合脂質マトリックス組成物は、12ジステアロイルSNホスファチジルコリン3モルの割合;コレステロール2モルの割合;およびNオキシカルボニル12ジステアロイルホスファチジルエタノールアミン0015モルの割合からなった。DSPCおよびPEGDSPEは、AvantiPolarLipids、アラバマ州、バーミングハムから購入した。コレステロールは、Calbiochemから購入した。乾燥脂質をホウケイ酸ガラス容器中で±01mgの精度で秤量し、以下の脂質分散段階に適した比率で、無水エタノールと混合した。DSPCの転移温度は高いため、溶解は典型的には、透明な溶液が得られるまで55~60°Cで行った。2TEAPnおよびTEASOS溶液の調製ポリリン酸ナトリウムは、SigmaChemicalCoによった。スクロース8硫酸ナトリウムは、TorontoResearchChemicals、カナダ、トロントから購入した。これらの塩を秤量して水に溶解し、12~25N溶液を得た。H型のアニオン交換体Dowex50Wx8200またはDowexHCRW2を用いて、ナトリウム塩を遊離酸に変換した。最初に使用する前に、樹脂を、3倍量の以下の溶液と共に撹拌し、その後デカンテーションすることにより洗浄した:10~12MHCl水溶液、2回;水、2回;10~12MNaOH水溶液、2回;水、2回;10~12MHCL水溶液、2回。洗浄した樹脂の水中懸濁液を、ナトリウム塩溶液1mLに対して少なくとも8mLの充填樹脂を有するように、適切な大きさのクロマトグラフィーカラム内に重力流下で充填した。2カラム量の30~36MHCL水溶液を通し、その後5カラム量の水を通すか、または溶出液の伝導度が1マイクロSを下回るまで水を通して、樹脂をさらに平衡化した。使用後は、以下を順次に通過させてカラムを再生し:1~12MHCl‐3カラム量;30~36MHCl‐2カラム量;水‐少なくとも5カラム量、または溶出液の伝導度が1μSを下回るまで、02um濾過した水中で室温で保存した。PnおよびSOSナトリウム塩溶液を、排出したカラム表面上に供し、75~150mLの樹脂ベッドサイズの場合、重力下で約1~2ml分の速度で流した。カラムを水で溶出した。溶出液を伝導度について試験した。10mS以上の伝導度を有する画分を回収した。より濃縮されたポリ酸溶液が必要な場合には、勾配形成塩のいく分高い損失を犠牲にするが、回収を20~50mSで開始することができる。ポリリン酸の場合、低pHにおけるホスホジエステル結合の加水分解による不安定性のために、回収した溶液はアミン滴定段階まで冷却して保持する。回収した溶出液は、07未満のpHおよび伝導度約120~200mSを有する。任意に、低pHにおけるポリリン酸の安定性のために、アミン滴定段階は即刻行う。FisherのHPLC等級トリエチルアミンを用いて、イオン交換から得られた酸溶液を滴定した。ストレートなTEAの規定度は、電位差滴定により決定した。TEAの0100mL分割量を、三つ組で、水20mlに入れた。この分割量を、01NHCl標準溶液で55~60のpH終点になるまで滴定した。計算上の規定度は、理論値717Nに近かった。測定量のポリリン酸またはスクロース8硫酸溶液を、pH電極の管理下でストレートなTEAで滴定した。アミンを分散させるために、徹底的な撹拌を必要とした。滴定終点はpH56~62であった。添加したTEAの量を正確に記録した。滴定した溶液の量を測定し、添加したTEA量および規定度に基づいてTEAの濃度を計算した。以下に示すように、必要とされる055±005Nまたは065±003NにTEA濃度を調整するため、必要に応じて水を添加した。得られたTEAPnまたはTEASOS溶液中の残存ナトリウムの量を、ナトリウム選択的ガラス電極を用いて電位測定法によって決定した。溶液1mLを水19mLで希釈し、電極製造業者の手引書に従って、増分法によりナトリウム濃度を決定した。残存ナトリウムの量は1mM未満、典型的には05mM未満であった。得られたTEAPnまたはTEASOS溶液は、陽圧送を用いて02μm酢酸セルロース滅菌フィルターを通した。溶液の最終pHおよびモル浸透圧を測定し、記録した。pH測定にはpHカロメルマイクロ複合全ガラス電極を使用し、またモル浸透圧測定には蒸気圧露点浸透圧計を使用する。溶液は、使用するまで冷却して保存した。3脂質のエタノール溶液を勾配形成緩衝液と混合することによる、勾配形成緩衝液中の脂質分散液の調製エタノール混合法を用いて、脂質を勾配形成塩溶液中に分散させた。全段階を60~65°Cで行った。耐薬品性ガラス梨型フラスコまたはチューブ中で、脂質を、約05~06MDSPCの濃度で100エタノールUSP中に溶解した。勾配形成塩溶液を60~65°Cに予熱し、エタノール脂質溶液に速やかに添加し、旋回およびまたはボルテックスすることで完全に混合した。エタノールの最終量は約10容量であった。01mmolリン脂質を超える規模の調製物の場合には、得られた懸濁液を60~65°Cの回転蒸発器に設置し、気泡形成の終了によって明らかになるように、エタノールの発生が停止するまで、回転しながら真空にした。01mmolリン脂質またはそれ以下の規模の場合には、この段階で脂質分散液からエタノールを除去しなかった。得られた脂質懸濁液は60~65°Cで保持し、押し出し段階に直ちに使用した。4規定孔の膜を通した脂質分散液の連続押し出し脂質懸濁液量が1mLまでの場合には、AvantiPolarLipidsによって提供される手動操作往復押し出し機を使用した。押し出し機には19mmトラックエッチフィルター膜が装填され、また金属加熱ブロックにより温度が自動調節される。1~10mL量の場合には、LipexBiomembranesの自動調温ガス圧作動性一方向流動押し出し機を使用した。押し出し機には、25mmフィルター膜を装填する。脂質懸濁液を、公称ポアサイズ100nm、80nm、または50nmを有する一連の2枚重ねポリカーボネート膜フィルターを通して、必要に応じて手送りまたはアルゴンガス圧により、60~65°Cで繰り返し押し出した。リポソームの大きさの影響が関心対象である場合には、押し出しは100nm、80nm、または50nm段階で終了した。使用したフィルターの正確な種類および押し出し回数は、各実験に関して以下に示す。押し出されたリポソームは60~65°Cで約15分間保持し、氷浴中で2~4°Cまで急冷した。氷浴中に15分置いた後、リポソームを室温に到達させた。5リポソーム外勾配形成緩衝液の除去およびリポソームの薬物充填緩衝液中への移行サイズ排除クロマトグラフィーを用いて、封入されなかった勾配形成塩を除去し、リポソームを薬物充填緩衝液中に移した。スケールアップ製造では、平行流濾過、中空繊維透析、または他の拡大縮小が可能な段階を用いることができる。リポソームをアニオン交換樹脂で処理することにより、リポソーム外ポリアニオンの完全な除去を確実にすることが有利である。薬物充填緩衝液は、水中に50gL無水デキストロースUSPおよび5mM組織培養保証HEPESを含み、NaOHでpH65に調整した。緩衝液は、02ミクロンナイロンフィルターを通して、真空濾過した。押し出したリポソームをSepharoseCL4Bを含むカラムでクロマトグラフにかけ、薬物充填緩衝液で溶出した。リポソームは空隙容量画分に出現し、溶出液の濁度に基づいて、供した量の約2倍の量でこれを回収した。溶出されたリポソームは、実施例70に従ってリン脂質濃度について、QELSにより粒径についてアッセイし、4~6°Cで保存した。6リポソームと薬物とのインキュベーションリポソームと混合する直前に、20mgmL薬物塩基の濃度になるように塩酸イリノテカンを水に溶解して、CPT11の保存液を調製した。溶液のpHは40~50であった。薬物溶液を、陽圧により02ミクロンポリエーテルスルホン滅菌フィルターを通して濾過した。上記の段階5で生成された薬物充填緩衝液中のリポソームの一定分量を、薬物脂質インプット比がリポソームリン脂質1mmol当たり015~055g薬物の範囲となるように、保存イリノテカン溶液と室温で混合した。特定のインプット薬物脂質比は、必要に応じて以下に示す。混合物のpHを1MNaOHで65に調整し、ガラスバイアル中の混合物をゆっくりと撹拌しながら58~62°Cの恒温水浴中で30~45分間インキュベートし、氷水浴中で急冷し、この温度で15分間置いた。次いで、次の段階のために、リポソームを室温まで加温した。この段階により、検討した薬物脂質比の全範囲で95を超える、典型的には98~100の封入効率が得られた。7非封入CPT11の除去、リポソームの保存緩衝液中への移行、最終的な濾過、および保存サイズ排除クロマトグラフィーを用いて、封入されなかった薬物を除去し、リポソームを保存緩衝液中に移した。保存緩衝液は、水中に20mMHEPES、135mMNaCl、pH65を含み、使用前に02ミクロンの真空濾過を行った。SephadexG75でのゲルクロマトグラフィーを、本質的に上記の段階2に記載した通りに行った。カラムから溶出されたCPT11リポソームを、リポソームリン脂質およびCPT11について、ならびにQELSにより体積加重平均粒径についてアッセイした。必要に応じて、薬物濃度を20~40mgmLの範囲になるよう調節した。リポソームは02ミクロンポリエーテルスルホン滅菌フィルターを通して濾過し、滅菌ポリプロピレンバイアルまたはPTFE張りねじ口ホウケイ酸4mLガラスバイアルのバイアル容積の約70~80まで、無菌的に分注した。バイアルを無菌的に閉じ、ラベルを貼り、4~6°Cで保存した。実施例12TEAPn含有リポソームの薬物充填効率およびインビボ薬物保持に及ぼす薬物脂質比の影響TEAPnの065N水溶液、pH61、モル浸透圧531mmolkgを捕捉したリポソームを、実施例11の手順に従って調製した。脂質分散液は、2枚重ね100nmポアサイズポリカーボネートフィルターを通して10回押し出した。リポソーム脂質マトリックスはまた、05mCimmolリン脂質の3HCHEを含んだ。薬物充填前のリポソームの大きさは、985±343nmであった。リポソームに、200、300、400、および500mgCPT11mmolリン脂質の初期薬物脂質比で充填した。リポソーム中の薬物量およびリン脂質量はそれぞれ、実施例71に従って分光光度法により、および実施例72のリン脂質抽出消化青色リンモリブデン酸アッセイにより決定した。インビボ薬物放出速度を評価するため、実施例8の方法に従った。6週齢雌SwissWebsterマウスに、5mgCPT11kg用量のリポソームを尾静脈から注射した。注射の8時間後および24時間後に、3匹の群のマウスに麻酔をかけ、心臓切開穿刺によりマウスを放血させた。血液をPBS中の氷冷004EDTA04mLと混合し、遠心分離によって血液細胞を分離し、CPT11の血漿濃度を実施例71に記載する分光蛍光法により測定した。消光補正した液体シンチレーション計数を用いて3HCHEの量を測定することで脂質を決定し、決定した薬物脂質比を注射したリポソームの薬物脂質比で割って、リポソーム内に保持された薬物量を計算した。遊離CPT11は血中クリアランスが速く、よって血中レベルが低いため、アッセイされた薬物はすべてリポソーム形態であると仮定した。結果を表8に示す。群間の薬物保持の差は、統計的に有意ではなかった。これらの試験の結果として、本発明者らは、薬物充填量を500mgmmolまで上げても、薬物充填にもインビボ安定性にも悪影響を及ぼさないと結論づけた。この比率をさらなる試験に採用した。表8イリノテカンTEAPnリポソームにおける薬物充填およびインビボ薬物保持に及ぼす薬物脂質比の影響実施例13TEASOS含有リポソーム中へのCPT11充填の薬物充填効率:リポソームの大きさの影響およびマウスにおけるインビボ薬物保持0643NTEASOS、pH57、モル浸透圧530mmolkgを有する勾配形成溶液を用いて、実施例11の通りに、捕捉溶液を含むリポソームを調製した。脂質分散液は、ポアサイズ50nm、80nm、または100nmの2枚重ねポリカーボネートフィルターを通して10回押し出した。リポソーム脂質マトリックスはまた、15mCimmolリポソームリン脂質の3HCHEを含んだ。リポソームの大きさは、動的光散乱により決定した。リポソームに、約550mgイリノテカンmmolリン脂質の初期薬物リン脂質比でCPT11を充填した。薬物充填リポソームはQELSにより大きさを決定し、実施例70および71に記載する通りにアッセイした。雌SwissWebsterマウスに、10mgkgの薬物用量でこれらのCPT11リポソーム製剤を尾静脈から注射した。24時間目にマウスを屠殺し、血液を回収し、実施例11の通りにCPT11およびリポソーム脂質についてアッセイした。結果を表9に要約する。表9TEASOSリポソームにおけるイリノテカン充填およびインビボ薬物保持驚くべきことに、非高分子ポリアニオン化有機ヒドロキシル化有機化合物であるスクロース8硫酸のトリエチルアンモニウム塩を含むリポソームは、ポリアニオンポリマーを含む同様のリポソームと比較して、劇的に良好なインビボ薬物保持を提供した。実施例14ラットにおけるCPT11充填SOSTEAリポソームの血中薬物動態リポソームを、実施例12の通りに調製した。中心静脈カテーテルを留置した2匹の9週齢雌SpragueDawleyラットに、10mgCPT11kgの用量でリポソームを静脈内投与した。所定の時点で血液試料を採取し、実施例9の通りに薬物およびリポソーム脂質含量について解析した。データは、各時点における注射脂質用量ml血漿およびリポソーム内薬物保持として表し、注射後時間に対してプロットし、単一指数関数的速度論モデルへの最良適合により、リポソーム脂質の半減期およびリポソームからの薬物放出の半減期を計算した。CPT11充填TEASOSリポソームからの薬物放出の半減期は、類似のTEAPnリポソームの半減期よりもはるかに長く568時間であった。実施例15ヒト結腸癌の皮下異種移植片を有する胸腺欠損ヌードマウスにおける遊離CPT11ならびにTEAPnおよびTEASOS含有リポソームに封入されたCPT11の抗腫瘍活性実施例11の通りに、065MTEA、pH61、およびモル浸透圧531mmolkgを有するTEAPn溶液、または0643MTEA、pH57、およびモル浸透圧530mmolkgを有するTEASOS溶液を用いてリポソームを調製した。押し出しは、ポアサイズ100nmを有する2枚重ねポリカーボネート膜を介した10回の通過を含んだ。得られたTEAPnおよびTEASOSリポソームは、それぞれ1123±155nmおよび1205±425nmの大きさを有した。リポソームに、500mgmmolのインプット薬物リン脂質比でCPT11を充填した。得られたリポソームは、TEAPnおよびTEASOS製剤に関して、それぞれ4656±265mgおよび4999±225mgCPT11mmolリン脂質の薬物含量を有した。HT29細胞はアメリカンタイプカルチャーコレクション、メリーランド州、ロックビルから入手し、供給者の推奨する通りに、10ウシ胎児血清、50UmlペニシリンG、および50μgmL硫酸ストレプトマイシンを添加したDMEM培地中で37°C、5CO2にて増殖させた。NCRnunuホモ接合性胸腺欠損雄ヌードマウスは、CharlesRiverから入手した。マウスの右腹側に、抗生物質を含まない増殖培地中に懸濁された5x106細胞を含む懸濁液01mLを皮下接種した。11日後、150mm3~350mm3の大きさの腫瘍を有する動物を、以下の方法に従って処置群に割り当てた。動物は腫瘍の大きさに従って順位づけし、腫瘍の大きさが減少していく6つのカテゴリーに分類した。各処置群内にすべての腫瘍の大きさが同等に表されるように、それぞれの大きさのカテゴリーから動物1匹をランダムに選択することによって動物11匹群の6つの処置群を形成した。13日目から開始し、動物に以下の調製物を4日間の間隔で4回尾静脈注射した:1対照;2遊離CPT1150mgkg、新たに調製した非緩衝生理食塩水中の5mgmL溶液として投与;3注射当たり25mgkgのTEAPnリポソームCPT11;4注射当たり50mgkgのTEAPnリポソームCPT11;5注射当たり25mgkgのTEASOSリポソームCPT11;6注射当たり50mgkgのTEASOSリポソームCPT11。実施例10に記載したように、動物の体重および腫瘍の大きさを週に2回モニターした。動物の秤量結果から腫瘍重量を減算して、動物体重を得た。動物は腫瘍接種後60日間観察した。群内の腫瘍がマウス体重の20に達した時点で、その群内の動物を安楽死させた。試験終了時点において、いくつかの群では、腫瘍再増殖の徴候なしに完全な腫瘍退行が見られた。これらの動物の腫瘍接種部位に由来する組織を採取し、残存する腫瘍細胞の病理学的解析のために保存した。本試験の結果を図6および図7に示す。遊離CPT11は、腫瘍増殖に対してわずかな効果しか有さなかった。リポソームはいずれも明白な効果を有し、大部分の動物において腫瘍退行をもたらし、その後再増殖をもたらした。TEAPnおよびTEASOSCPT11リポソームのいずれにおいても、50mgkg用量の方が25mgkg用量よりも効果的であった。腫瘍の大きさのデータから計算した平均腫瘍倍加時間は以下の通りであった:対照‐42日;遊離薬物、50mgkg‐48日;TEAPnリポソーム薬物、25mgkg‐436日;TEAPnリポソーム薬物、50mgkg‐475日;25mgkgのTEASOSリポソーム薬物‐482日;および50mgkgのTEASOSリポソーム薬物‐超56日。このように、本発明に従って調製したリポソームCPT11は、同じ用量およびスケジュールで投与した遊離薬物よりも少なくとも約10倍活性が高かった。予想外にも、TEASOSCPT11リポソームは、同じ用量で投与したTEAPnCPT11リポソームよりも、腫瘍増殖の低下に顕著に効果的であった。注射当たり50mgkgの遊離薬物およびTEAPnリポソーム薬物で処置した群では、腫瘍再増殖の見られない動物は存在しなかったのに対して、25mgkgの各リポソーム製剤を投与した群では、試験終了時点で動物1匹に腫瘍がなく、50mgkgのTEASOSリポソームCPT11製剤を投与した群では、試験終了時点で動物4匹に再増殖の徴候がなく腫瘍が認められなかった。薬物はいくらかの毒性を示した。遊離CPT11を投与した動物は、薬物注射から約1時間後に一時的な病的状態を経験したが、リポソームCPT11ではこのようなことはなかった。遊離CPT11を投与した動物は、処置中に永続的に体重が約6減少し、回復することはなかった。いずれのリポソームCPT11製剤を投与した動物も、2回目の注射と3回目の注射の間の時点で、処置前の値の平均約5または約9という一過性の体重減少を経験したが、最終的には正常な体重に到達した。このように、リポソーム薬物の毒性は遊離薬物の毒性以下であり、その上リポソーム薬物の有効性の方が実質的に高かった。体重減少は薬物処置が終了した時点で回復し、すべての動物が末期的病的状態もなく中毒死もせずに体重を回復した。その後、動物は腫瘍退行と同時に体重が増加した。生理食塩水対照群では、大きな腫瘍を生じた動物は、腫瘍に関連した病的状態のために明らかに体重減少を経験した。概して、予めポリアニオン化糖を捕捉しているリポソーム内に薬物を充填したリポソーム薬物製剤は、非リポソーム薬物よりも毒性が低いと同時に、最も効果的であることが判明した。実施例16マウスにおける遊離CPT11およびリポソームCPT11の毒性標準マウスにおける単回静脈内注射後の最大耐量を決定することにより、遊離CPT11と本発明に従って調製したリポソーム封入CPT11の急性毒性を比較した。以下の材料を使用した。1塩酸イリノテカン989および水分76を有するCPT11調製物。本試験では、薬物製剤は、水分含量またはイリノテカン塩基含量を補正せずにそのまま調製した。2リポソームCPT11は、実施例11の通りに、DSPC200molの割合、コレステロール133molの割合、PEGDSPE1molの割合の脂質マトリックスを使用し;065MTEA、pH64を有するTEASOS溶液を捕捉し;5mMHEPES緩衝液、5デキストロース、pH65中のリポソームに、500mg薬物mmolリン脂質のインプット薬物脂質比で薬物を60°Cで30分間充填して調製した。充填効率は99であった。リポソームの大きさ:101±37nm。リポソームは、媒体、20mMHEPESNa、135mMNaCl;pH65中で製剤化した。注射した製剤の薬物濃度は、以下の表中に記載する。3遊離CPT11溶液。遊離薬物保存溶液は、5デキストロース水溶液中に22mgmLの塩酸イリノテカンを溶解し、02μm濾過により滅菌して調製した。この保存溶液は、注射する前に滅菌5デキストロースで希釈した。4動物。雌SwissWebsterマウス、6~8週齢は、Harlan、米国によった。MTDの決定は一般に、米国国立癌研究所開発途上治療プログラムによって採用されている手順に従った。手順は以下の3つの段階を含んだ。段階1:用量増大係数18での範囲模索段階。動物2匹の群に、60mgkgの用量から開始し、急性致死または末期的病的状態が動物のいずれかに認められるまで、用量増大係数18を継続して、遊離イリノテカンまたはリポソームイリノテカンを尾静脈注射した。致死末期的病的状態用量の1段階下の用量を記録する。段階2:用量増大係数115での範囲模索段階。動物2匹の群に、段階1で記録した用量から開始し、急性致死または末期的病的状態が動物のいずれかに認められるまで、用量増大係数115を継続して、遊離イリノテカンまたはリポソームイリノテカンを尾静脈注射した。致死末期的病的状態用量の1段階下の用量を、仮のMTDとして記録する。段階3:検証段階。動物5匹の群に、段階2で決定した仮のMTDの遊離イリノテカンまたはリポソームイリノテカンを静脈内注射する。動物を7日間追跡し、動物の体重を週に2回記録して注射前の体重と比較する。動物の一般健康状態を観察する。観察期間中に、致死、病的状態の進行、または注射前体重の15を超える体重減少が認められない場合には、その用量を急性単回注射MTDとして確証されると見なす。これらの影響のいずれかが生じた場合には、係数115による次の低い用量でこの実験を繰り返す。検証段階のさらなる統計を得るため、生存動物の体重動学を注射後11日目まで追跡した。324mgkgを超える用量のリポソームイリノテカンは、濃度および注射量の限界から投与が不可能であった。結果を表10に示す。表10マウスにおけるCPT11製剤のMTD模索試験結果このように、遊離CPT11のMTDは80mgkgであるのに対して、リポソームCPT11のMTDは、驚いたことに324mgkgの最高投与用量でさえも達成されなかった。したがって、本発明によるCPT11のリポソーム封入は、薬物毒性を少なくとも4倍減少させた。実施例17CPT11充填TEASOSリポソームの薬物漏出に対する保存安定性TEASOS方法を使用し、500~550mgmmolリン脂質の薬物脂質インプット比で、5バッチのリポソームCPT11を調製した。リポソームは、以下の表に示すように、80nmまたは100nmポアサイズを有するポリカーボネート膜を通す膜押し出しにより調製した。リポソームは02μmのフィルター滅菌をし、135mMNaCl、20mMHEPESNa、pH65中、CPT1134~145mgmLで、4~8°Cにて保存した。表示の保存期間後、保存緩衝液を溶離液として使用するSephadexG75でのゲルクロマトグラフィーにより、漏出した薬物を除去した。ゲルクロマトグラフィー前後のリポソーム中の薬物およびリン脂質濃度を、それぞ実施例70および71に記載する通りに分光光度法および酸消化青色リンモリブデン酸法を用いてアッセイした。本発明に従って調製したCPT11リポソームは、非常に安定であった。保存期間中のこれらのリポソームからのCPT11の漏出は、6ヶ月にわたって5未満であった。表11保存期間中のCPT11リポソームの封入安定性実施例18トポテカンを充填したリポソームTEAPn溶液およびTEASOS溶液を捕捉したリポソームを、実施例11の通りに調製した。塩酸トポテカンの保存溶液は、リポソームと混合する直前に、トポテカン塩酸を実際のトポテカンHCl含量で計算して15~20mgmlで水に溶解することにより調製した。1NHClでpHを30に調整した。薬物溶液は、陽圧により02ミクロンポリエーテルスルホン滅菌フィルターを通して濾過した。薬物充填緩衝液中のTEAPnまたはTEASOS含有リポソームの一定分量を、薬物脂質インプット比が015~045gmmolリポソームリン脂質の範囲となるように、保存トポテカンHCl溶液と室温で混合した。好ましい比率は、リポソームリン脂質1mmol当たりトポテカンHCl035gであった。ガラス容器中の混合物をゆっくりと撹拌しながら55~62°Cの恒温水浴中で30~60分間インキュベートし、氷水浴中で急冷し、この温度で5~15分間置いた。この段階により、89~90または97~100の封入効率が得られた。サイズ排除カラムクロマトグラフィーを用いて、封入されなかったトポテカンを除去し、リポソームを保存填緩衝液中に移した。カラムに供す前に、120量の288M塩化ナトリウム水溶液と混合してリポソーム調製物のイオン強度を上げ、この混合液を約15分間インキュベートした。本発明者らは、予想外にも、リポソーム媒体のイオン強度を充填時の低い値から20mMNaClを超えるより高い値へ、好ましくは50mMNaCl以上に調整することで、おそらくはリポソーム内部に封入されている薬物ではなく膜結合トポテカンの除去を促進することにより、非封入薬物の除去が改善され、凝集に対するトポテカン充填リポソームの安定性が増すことを見出した。手順の残りの部分は実施例11、段階7に従った。結果を以下の表12に示す。実施例19トポテカンの抗HER2イムノリポソーム製剤の調製HER2過剰発現細胞内への高い内部移行に関してファージディスプレイライブラリーから選択された抗HER2一本鎖ヒトFv抗体断片、F5にトポテカンリポソームを結合して、HER2表面受容体チロシンキナーゼ癌タンパク質を過剰発現する癌細胞によって特異的に内部に取り込まれ得るトポテカンイムノリポソームを調製した。F5は、約150nMの親和性でHER2受容体の細胞外ドメインに結合して、迅速な内部移行をもたらす27KDaタンパク質である。リポソームの結合に関しては、一般に米国特許第6210707号およびNielsenetalBiochimBiophysActav1591p109118の方法に従った。まず、F5の親水性リポポリマー複合体を調製した。F5アミノ酸鎖のC末端は、付加された末端システイン基を有した。F5Cys構築物を大腸菌で発現させ、プロテインAカラムクロマトグラフィーにより細菌溶解液からこれを単離した。プロテインA溶出画分をアニオン交換樹脂に吸収させて発熱物質および宿主DNAを除去し、末端システインのチオール基を遊離させるためにチオール還元剤で処理した。還元されたF5Cysを、SPSepharoseFastFlowを用いてイオン交換クロマトグラフィーによりさらに精製した。精製されたタンパク質を、チオール反応性脂質ポリリンカー、AvantiPolarLipidsInc、米国、アラバマ州により市販されている、分子量2000を有するPEGの誘導体であるNプロピオニルアミドポリオキシカルボニル12ジステアロイルホスファチジルエタノールアミンに結合させた。タンパク質とリンカーを14のモル比で緩衝水溶液中でインキュベートし、未反応のリンカーを1mMシステインで失活させた。反応中に、F5Cysの末端システインはリンカーのマレイミド基に共有結合される。得られたF5PEGDSPE複合体は、大きな見かけの分子量を有するミセルの形態で水溶性であり、サイズ排除クロマトグラフィーにより未反応のタンパク質から分離した。280nmでのUV分光光度法により精製複合体中のタンパク質の量を決定し、リン脂質の定量化に用いられるのと同じ分光光度法を用いてリンカーの量をアッセイした。精製F5PEGDSPE複合体は水中で安定であり、十分に免疫反応性であり、65°Cで少なくとも1時間および37°Cで少なくとも3ヶ月間、変性および反応性の喪失に対して安定であった。抗HER2イムノリポソームトポテカンを調製するため、実施例18のトポテカン充填リポソームを、水性生理食塩緩衝液中、リン脂質1マイクロモル当たりタンパク質15マイクログラムの比率でF5PEGDSPEと混合した。混合物を60°Cで40分間インキュベートし、氷上で冷却し、SepharoseCL4Bを含むカラムでクロマトグラフにかけ、残存ミセル複合体、非結合タンパク質、およびインキュベーション中に放出された可能性のある微量のリポソーム外薬物を除去した。膜に取り込まれたF5PEGDSPEを有するリポソームを5mMHEPES144mMNaCl緩衝液pH74で溶出し、カラムの空隙容量中に回収し、滅菌濾過し、分注して保存した。リポソームに取り込まれたF5の量は典型的には、添加した複合体の80であった。これは、リポソームをSDSPAGEにかけ、クマシー染色されたF5バンドをデンシトメトリーにより定量化して決定した。イムノリポソーム調製物中の薬物および脂質濃度は、非標的リポソームと同様に決定した。トポテカンリポソームおよびF5イムノリポソームの特性を表12に要約する。表12トポテカンリポソームおよびイムノリポソームの特性実施例20リポソーム内へのトポテカンの充填に及ぼす充填緩衝液pHおよび薬物脂質比の影響05NTEAPn、pH62、モル浸透圧413mmolkgを捕捉したリポソームは、エタノール注入法を使用し、100nmポアサイズを有する2枚重ねポリカーボネートフィルターを通して5回、および50nmポアサイズを有する2枚重ねポリカーボネートフィルターを通して10回押し出して調製した。充填緩衝液は、50~65の範囲の様々なpHに調整した5mMMES、50gLデキストロースであった。リポソームの大きさは、QELSにより731±213nmであった。100mgmmolのインプット薬物リン脂質比でトポテカン保存溶液を充填緩衝液中のリポソームと混合し、混合物を60°Cで45分間インキュベートし、氷上で15分間急冷し、さらにSephadexG75カラムを用いて20mMHEPES、135mMNaCl、pH65で溶出して非封入薬物を除去することで、リポソームに充填した。トポテカンおよびリン脂質は、分光光度法によって定量化した。結果から、トポテカンの充填は、pH55~65の範囲でほぼ定量的であることが示された。表13TEAPnを封入したリポソーム内へのトポテカン封入のに及ぼす充填緩衝液pHの影響充填効率に及ぼす薬物と脂質の比の影響についても検討した。TEAPnを捕捉したリポソームは、最終押し出し段階が2枚重ね008μmポリカーボネートフィルターを通して10回であったこと以外は、上記の通りに調製した。充填はpH65で行った。リポソームの大きさは、QELSにより931±151nmであった。結果から、薬物充填効率は、試験した薬物脂質比の全範囲において85を超えることが示された。表14TEAPnを含むリポソーム内への封入効率に及ぼす薬物脂質比の影響実施例21血漿の存在下におけるインビトロでのトポテカンリポソーム安定性05NTEAPn、pH62、モル浸透圧413mmolkgを捕捉したリポソームを、実施例18に記載した通りに調製した。2枚重ね100nmポアサイズポリカーボネートフィルターを通して10回押し出すことで、964±293nmの大きさを有するリポソームが生成された。血漿中のリポソーム脂質を定量化するため、脂質溶液中に05μCiμmolDSPCの3HCHEを含めた。トポテカンを、150mgmmolの薬物リン脂質比で、pH60、58°Cで45分間充填した。充填効率は14848±1026μgトポテカンμmolリン脂質であった。マルチウェル微小透析装置中で、リポソームを50ヒト血漿と共にインキュベートした。ヒトドナー血漿を、002アジ化ナトリウムを含む等量のHEPES緩衝生理食塩水、pH65で希釈し、透析器の下の容器に入れた。ウェルは、30nmポアサイズを有するポリカーボネート膜によって容器から分離されており、血漿タンパク質および小分子の自由な通過は提供されたが、リポソームの自由な通過は提供されなかった。リポソームを、25mMリン脂質および50容量血漿の濃度となるように計算した量の血漿およびHEPES緩衝生理食塩水と混合した。装置を37°Cでインキュベートし、容器の内容物をゆっくりと撹拌した。インキュベーションの8時間後、下の容器の内容物を新鮮な50血漿と交換した。所与の時点でウェルから50μL分割量を採取し、22~24mLのSepharoseCL2Bを含むカラム、溶離液HEPES緩衝生理食塩水でクロマトグラフにかけ、血漿タンパク質および遊離薬物からリポソームを分離した。リポソームは空隙容量画分中に回収された。90イソプロパノール水溶液01NHCl中で血漿試料を可溶化した後に、384nmでの励起および524nmでの発光を用いて蛍光光度法によりトポテカンを定量化し、3HCHEのシンチレーション計数により脂質を定量化した。その時点で決定された薬物脂質比をインキュベーション前の初期比と比較して、各時点で封入されて残存したトポテカンのを得た。インキュベーションの8時間後、リポソーム内に残存している薬物の量は初期値の約55であった。表1550ヒト血漿中における37°CでのTEAPn勾配によって充填したリポソームからのトポテカンのインビトロ放出実施例22捕捉されたTEAPn勾配を用いた様々な薬物脂質比のトポテカンリポソーム:マウスにおけるインビボ薬物保持および循環寿命勾配形成塩溶液を封入したリポソームは、2枚重ね100nmポアサイズポリカーボネートフィルターを通す12回の押し出しを用いて、実施例18のように調製した。リポソームの大きさは、QELSにより1077±191nmであった。5mMHEPES、50gLデキストロース、pH65中のリポソームを、130~360μgμmolの範囲の薬物リン脂質比でトポテカンの保存水溶液と混合し、その後58°Cで45分間インキュベートし、氷上に15分間置き、SephadexG75クロマトグラフィーにより非封入薬物を除去した。12週齢雌FvBマウスに、三つ組で、リポソームを5mgトポテカンkg体重の用量で尾静脈注射した。表示の時点で、典型的には注射の8時間後または24時間後に、マウスに麻酔をかけ、放血させ、血液試料を実施例8のように薬物およびリポソーム脂質に関してアッセイした。結果を表16に示す。24時間後、初期薬物充填量の約6~32が封入されて残存した。薬物の充填量が高いほど、薬物保持は長期であった。表16様々な薬物脂質比に対する、TEAPn勾配法を用いて充填した原型トポテカンリポソームのインビボ薬物保持および循環寿命実施例23様々な捕捉アンモニウム塩およびトリエチルアンモニウム塩を用いて充填したトポテカンリポソームのインビボ薬物保持および循環寿命押し出し段階が2枚重ね200nm孔フィルターの通過10回、2枚重ね100nm孔フィルターの通過10回、および2枚重ね50nm孔フィルターの通過20回を含むこと以外は実施例18のようにして、DSPE、コレステロール、およびPEGDSPEから構成され、022mCimmolDSPEの3HCHEをさらに含むリポソームを調製した。リポソームは以下の塩溶液を含んだ。05Nデキストラン硫酸アンモニウム溶液は、Sigmaから購入したデキストラン硫酸ナトリウムから、これを実施例4の手順に類似したイオン交換手順によってアンモニウム塩に変換して調製した。デキストラン硫酸溶液は、124Mアンモニア水で直ちに滴定した。ADS溶液は、pH566、モル浸透圧208mmolkgを有した。048Nスクロース8硫酸アンモニウムは、実施例6と同様に調製したが、水酸化アンモニウムを滴定に使用した。この溶液は、pH627、モル浸透圧258mmolkgを有した。047Nスクロース8硫酸トリエチルアンモニウムは、実施例6の通りに調製した。この溶液は、pH66、モル浸透圧297mmolkgを有した。346±1mgmmolのインプット薬物リン脂質比でリポソームと薬物を61~62°Cで40分間インキュベートし、その後氷上で10分間インキュベートすることで、10mMMESNa、50gLデキストロース、pH65の水溶液中のリポソームにトポテカンを充填した。SephadexG25、溶離液‐2mMヒスチジン、144mMNaCl水溶液、pH66でのクロマトグラフィーにより、リポソームを非封入薬物から精製した。7~9週齢雌SwissWebsterマウスに、三つ組で、これらのリポソームトポテカン製剤を5mgトポテカンkg体重の用量で尾静脈注射した。注射の8時間後または24時間後に、血液を回収し、実施例22の通りにトポテカンおよびリポソーム脂質について解析した。結果を以下の表17に示す。3つのリポソーム製剤はいずれも、注射後24時間で注射用量の約23~28が血中に残存して、非常に近接したリポソーム循環寿命を示したが、意外なことには、TEASOSリポソームおよびASOSリポソームにおける薬物保持は、規模および統計的有意性の両方の点から、ADSリポソームにおける薬物保持よりも良好であった。TEASOS含有トポテカンリポソームにおける薬物保持は、ASOS含有トポテカンリポソームにおける薬物保持よりも良好であった。表17TEASOS、アンモニウムSOS、およびデキストラン硫酸アンモニウムを用いて調製したトポテカンリポソームのインビボ薬物保持および循環持続実施例24ラットにおけるリポソームトポテカンの薬物および脂質血漿薬物動態循環寿命およびトポテカン放出パラメータをラットにおいて評価した。エタノール混合押し出し法によりリポソームを調製し、実施例18に記載した通りにTEAPn勾配またはTEAスクロース8硫酸勾配を用いて、および様々な薬物脂質比で、トポテカンを充填した。脂質マトリックスの定量化のため、脂質リポソームは05~15mCimmolDSPCの3HCHEを含んだ。中心静脈カテーテルを留置した雌SpragueDawleyラットに、4~5mgkg体重の用量でトポテカンリポソームを静脈内注射した。カテーテルに生理食塩水を流した。選択した時点において、血液試料をカテーテルからヘパリン処理シリンジ中に採取して、004EDTAを含む冷リン酸緩生理衝食塩水04mLと混合し、遠心分離により血液細胞を分離し、3HCHE放射能計数により脂質について、および蛍光光度法によりトポテカンについて上清をアッセイした。アッセイの結果は、ヘマトクリット値を40と仮定し、採取した血液試料の重量から計算して、血漿希釈度に関して補正した。薬物および脂質の総血中用量は、体重の65として計算した血液量から推定した。所与の時点における薬物脂質比と注射したリポソームの薬物脂質比を比較することにより、リポソーム内に保持されたトポテカンの割合を計算した。以下の表18に、脂質、薬物の血中半減期、および薬物放出の半減期、ならびにリポソームの他の特性を要約する。薬物動態曲線を図8Aおよび8Bに示す。要約すると、薬物および脂質の血中PK曲線は、単一指数モデルに良好に適合した。90~100nmの大きさであることおよびPEG化脂質が非常に少量であることにもかかわらず、リポソームは意外にも良好な循環寿命を示した。トポテカンの最も遅い放出は、TEASOS法を用いて充填したリポソームで認められた。表18ラットにおける脂質、薬物の循環半減期、および原型トポテカンリポソームからの薬物放出の半減期実施例25トポテカンリポソームの保存期間中の漏出に対する薬物安定性上記の試験用に調製したいくつかの原型製剤の試料を4~6°Cで様々な期間保存し、リポソームからの薬物漏出に対する封入トポテカンの保存安定性を評価した。リポソーム試料をSephadexG75カラムに通し、20mMHEPES、135mMNaCl、pH65で溶出してリポソーム外薬物を除去し、分光光度法により薬物含量について、および3HCHE放射能計数により脂質について評価した。結果から、保存期間中、リポソーム内にトポテカンが良好に保持されることが示される。表19保存期間中の原型トポテカンリポソームにおける薬物保持実施例26HER2過剰発現癌細胞によるリポソームトポテカンおよびイムノリポソームトポテカンのインビトロ取り込み本試験では、本発明に従って調製したトポテカン充填抗HER2イムノリポソームが、細胞培養におけるHER2過剰発現細胞内に特異的にトポテカンを送達する能力について取り組んだ。実施例19のTEAPn法を用いて、リポソームを調製し、トポテカンを充填した。HER2過剰発現ヒト乳癌細胞は、T75フラスコ中、10ウシ胎児血清、50μgmL硫酸ストレプトマイシン、および50UmlペニシリンGを添加した改変McCoy5A培地で、37°C、5CO2でコンフルエントになるまで培養した。トリプシン処理により細胞を回収し、完全増殖培地05mL中、150000細胞ウェルで24ウェル細胞培養プレートに播種し、一晩順化させた。培地を、001~01mMリン脂質の範囲内の選択した濃度のトポテカン製剤を含む完全増殖培地05mLと交換した。各条件について三つ組のウェルを使用した。対照ウェルは、薬物およびまたはリポソームの非存在下でインキュベートした。プレートをゆっくり撹拌しながら37°C、5CO2で4~8時間インキュベートした。培地を吸引し、CaおよびMg塩を含む冷ハンクス平衡塩類溶液の1mL部分で細胞を4回リンスした。水に溶解した1TritonX10001mLを添加して細胞を可溶化し、細胞溶解液中の薬物の量を蛍光光度法によって決定した。10~2500ngトポテカンウェルの範囲で検量線を得たが、細胞の自己蛍光バックグラウンドの減算後は二次多項式に適合した。マイクロプレート蛍光光度計を使用する場合、フィルター選択は励起に関しては40030nmであり、発光に関しては53025nmであった。キュベット蛍光光度計およびマイクロプレート蛍光光度計のいずれからも、同じ結果が得られた。2つの実験の結果を、以下の表20に要約する。HER2標的化リポソーム薬物の顕著な細胞取り込みが認められた。興味深いことには、遊離トポテカンの取り込みもまた、HER2標的化イムノリポソームトポテカンよりも顕著に低かった。このことは、血清の存在する細胞増殖培地中でトポテカン分子のカンプトテシンラクトン環が迅速に加水分解され、低い細胞透過性および低い細胞毒性を有し得る薬物のカルボン酸体が生じることによって説明され得る。要約すると、細胞標的化された内部移行可能なリガンド結合イムノリポソームが、トポテカンを細胞内に送達する能力が確認された。表20TEAPnを含むトポテカンリポソームおよび抗HER2イムノリポソームのインビトロ細胞取り込みリポソームの特性については表12を参照されたい。実施例27インビトロでのHER2過剰発現癌細胞に対するリポソームトポテカンおよびイムノリポソームトポテカンの細胞毒性抗HER2トポテカンイムノリポソームのHER2過剰発現癌細胞内への細胞内薬物送達の能力が確認された時点で、内部移行したリポソームが活性型の薬物を放出し得ることを確認することが重要であった。この目的のために、遊離トポテカン、リポソームトポテカン、および抗HER2イムノリポソームトポテカンのインビトロ細胞毒性について検討した。リポソームトポテカン製剤を調製し、実施例26に記載した通りにSKBr3細胞を培養し、回収した。細胞を、完全増殖培地01mL中5000細胞で96ウェル細胞培養プレートに三つ組で播種し、一晩順化させた。プレートの最も端の列および段は空のままにした。トポテカンリポソーム、イムノリポソーム、または遊離薬物の滅菌調製物を、90、30、または10μgmLから開始する濃度になるよう完全薬物培地で希釈し、係数3で培地で段階希釈した。ウェル内の培地を薬物リポソーム希釈物02mLと置換し、特定の時間、37°C、5CO2でインキュベートした。各列中の1つのウェルは薬物を含まない培地と共にインキュベートして、非処理対照とした。薬物含有培地をウェルから吸引し、薬物を含まない培地02mLで細胞をリンスし、薬物を含まない新鮮な培地02mLをすべてのウェルに添加した。プレートを37°C、5CO2で4日間インキュベートした。培地交換をせずに、無血清培地中のテトラゾリウム色素2mgmL溶液003mLを、各ウェルに添加した。プレートを37°C、5CO2でさらに2~3時間インキュベートした。培地を吸引し、ウェルを70容量イソプロパノール水溶液、0075NHCl02mLで満たし、ホルマザン色素が溶解するまで穏やかに撹拌した。540nmにおいて、マイクロプレート光度計を用いてホルマザン溶液の吸光度を測定した。バックグラウンドについて補正した、実験ウェルにおける吸光度と非処理細胞を含むウェルにおける吸光度との比として、非処理対照のとしての細胞生存度を計算した。データを薬物濃度に対してプロットし、グラフを使って生存度濃度曲線と50生存度線の交点からIC50用量を概算した。結果を図9に示す。遊離トポテカンまたは非標的化リポソームトポテカンの、50増殖抑制をもたらす薬物用量は30μgmLを超過し;F5イムノリポソームトポテカンの場合には015μgmLであった。これらの結果は、標的化薬物取り込みデータと一致した。実施例28マウスにおけるリポソームトポテカンおよびF5イムノリポソームトポテカンの比較安定性および血漿薬物動態以下の条件下でエタノール脂質溶液混合押し出し手順を使用し、実施例11および19に従って、15mCimmolリン脂質の放射性脂質標識3HCHEを含むトポテカンリポソームを調製した:勾配形成塩溶液:0643Nスクロース8硫酸トリエチルアンモニウム;ポリカーボネート膜押し出し:2枚重ねPCTEフィルター、80nmポアサイズの15回の通過;トポテカン充填:薬物リン脂質インプット比350mgmmol;F5scFv結合は実施例19に記載した通りに行った。リポソームは以下の特性を有した。QELSによる大きさ:重量平均1012nm;標準偏差、201nm。薬物封入:トポテカンリポソーム3593±274mgmmolリン脂質;トポテカンF5scFvイムノリポソーム3263±159mgmmolリン脂質。本試験は、一般に実施例22の通りに実施した。9匹の雄SwissWebsterマウスの群に、TopoLs、TopoF5ILs、または新たに調製した非緩衝生理食塩水中のトポテカン1mgmLを、5mgトポテカン塩基kg体重の用量で尾静脈注射した。注射後1時間、8時間、または24時間の時点で、時点当たり3匹の動物を、ケタミンキシラジン麻酔下で心臓切開穿刺により放血させ、PBSEDTAを含むチューブ中に血液を回収し、トポテカンおよびリポソーム脂質についてアッセイした。動物当たりの血液量を体重の63、および圧縮血液細胞画分を45と仮定し、投与用量を100として、所与の時点で血中に残存している薬物および脂質用量の量を計算した。血漿試料の薬物脂質放射能比を注射したリポソームのものと比較することにより、各時点におけるリポソーム内に封入されて残存した薬物の量を、それぞれの動物について個々に計算した。注射の1時間後に回収した血漿試料中の遊離トポテカンの量は、注射用量の1未満であった;そのため、遊離トポテカン群のさらなる時点については試験しなかった。遊離トポテカンの血中クリアランスが速く、血中レベルが低いことから、本発明者らは、いずれの時点においても血中に見出されるトポテカンは本質的にすべてリポソームに封入されているトポテカンを表すと仮定した。結果を以下の表21に要約する。顕著なことには、本発明に従って調製したリポソームは、動物の血流への注射から24時間後でさえも、元の薬物充填量の79~85を保持した。リポソーム群とイムノリポソーム群との間の脂質または薬物の平均血漿値の差は18~136の範囲内であり、非常に近接しているか、またはアッセイ誤差の範囲内であった。スチューデントt検定を用いて計算した、各時点における薬物または脂質値に関するリポソーム群とイムノリポソーム群との間の帰無仮説の確率は0543~0938であった。本発明者らは、2つの調製物間の薬物または脂質の残存血中レベルの差は無視でき、統計的に識別不能であると結論づける。表21静脈内注射後の様々な時点におけるマウスの血漿中のリポソーム脂質、トポテカン、およびリポソーム内に封入されて残存するトポテカンの量実施例29BT474異種移植片モデルにおけるリポソームトポテカンおよび抗HER2イムノリポソームトポテカンの抗腫瘍効果本試験では、薬物捕捉のためにポリリン酸トリエチルアンモニウム勾配を使用する最初の原型トポテカンイムノリポソームを使用した。リポソームは、一般に実施例11および19の方法に従って調製した。脂質マトリックス成分‐DSPC、コレステロール、およびメトキシPEGDSPE‐を100エタノールUSPと60°Cで混合して、05mMリン脂質を含む溶液を得た。エタノール脂質溶液をポリリン酸トリエチルアンモニウム水溶液により60°Cで希釈し、完全に混合し、60°Cで自動調温ガス圧押し出し機を用いて100nmのポアサイズを有する2枚重ねポリカーボネート膜を通して10回押し出した。押し出したリポソームを氷上で冷却し、封入されなかったポリリン酸トリエチルアンモニウムを、5デキストロース5mMHEPESNa緩衝液、pH65を溶離液として使用してSepharoseCL4Bでのゲルクロマトグラフィーにより除去した。リポソームの大きさは、QELSにより1038±351nmであった。035mgトポテカン塩基μmolリン脂質の比率で、この緩衝液中のリポソームを塩酸トポテカンと共に60°Cで30分間インキュベートした。インキュベーションが終了した時点でリポソームを氷上で冷却し、SephadexG75、溶離液20mMHEPESNa、135mMNaCl、pH65でクロマトグラフにかけ、封入されなかった薬物を除去した。以前に報告したように、蛍光光度法により薬物含量を測定し、リン酸アッセイにより脂質含量を測定した。このようにして得られたリポソームトポテカンは、3654±231mgトポテカン塩基mmolリン脂質を有する。HER2標的化トポテカンイムノリポソームを調製するため、このリポソームトポテカン調製物の一部を、一般に実施例19に記載した通りに、抗HER2scFvF5とマレイミドPEGDSPEリンカーの精製複合体と共にインキュベートした。簡潔に説明すると、10スクロース10mMクエン酸Na水溶液、pH65中のF5PEGDSPE複合体を、15mgタンパク質mmolリポソームリン脂質の比率でトポテカンリポソームと混合し、60°Cで30分間インキュベートした。インキュベーション混合物を氷上で冷却し、SepharoseCL4B、溶離液20mMHEPESNa、135mMNaCl、pH65でクロマトグラフにかけ、取り込まれなかったscFv複合体を除去した。このさらなるインキュベーション後に、薬物脂質比は14まで減少した。1~2mgmLのトポテカンを含むトポテカンリポソームおよびトポテカンイムノリポソーム製剤を02ミクロン滅菌シリンジフィルターに通し、ポリプロピレンバイアルに無菌的に分注し、使用するまで最長1ヶ月間4~6°Cで保存した。遊離トポテカンは、塩酸トポテカン粉末を2mgmLで5デキストロース中に溶解して新たに調製し、02ミクロンシリンジフィルターを通して滅菌した。HER2過剰発現BT474ヒト乳腺腺癌異種移植片モデルは、実施例10に記載した通りに確立した。腫瘍接種後13日目に、120~350立方mmの腫瘍を有する動物を選択し、それぞれ動物12匹の3つの処置群および1つの対照群にランダムに割り当てた。腫瘍接種後14日、18日、および21日目に、マウスを、注射当たり5mg用量kg体重のトポテカン製剤または等量の生理食塩水の静脈内注射により処置した。動物の一般健康状態を毎日モニターした。腫瘍の大きさおよび体重を、腫瘍接種後53日目まで週に2回モニターした。腫瘍が体重の20に達した動物または20以上に達する進行性体重減少を有する動物は、安楽死させた。図11および図12は、それぞれ腫瘍増殖および動物体重データを示す。リポソームトポテカン製剤は腫瘍増殖抑制において遊離薬物よりも活性が高く、F5標的化リポソーム製剤は非標的化リポソーム製剤よりも活性が高かった。観察期間の終了時点における平均した腫瘍の大きさは、処置群間で有意に異なった。このように、リポソーム封入トポテカンは遊離薬物よりも活性が高く、抗HER2イムノリポソームトポテカンは非標的化リポソーム薬物よりも活性が高かった。リポソーム群およびイムノリポソーム群では、最初の退行後、腫瘍再増殖が最後の処置の10日以内に起こった。遊離薬物群では腫瘍退行は認められなかった。所与の用量のトポテカンのリポソーム製剤は、遊離薬物よりも毒性が高いことが認められた。消化管毒性が存在した。リポソームトポテカンを投与した動物は下痢を発症し、ピーク時には平均約14の体重減少を経験した。非標的化リポソーム群では、試験の終了時に15の持続的体重減少を有した1匹を除いて動物は回復したのに対し、F5標的化群では5匹の動物が末期的病的状態を発症して死亡し;さらに2匹が約15の持続的体重減少を有した。対照群および遊離薬物群では、体重減少も処置に関連した病的状態も認められなかった。実施例30週1回の静脈内注射を3回行ったマウスにおける遊離トポテカンおよびリポソームトポテカンの最大耐量本試験は、ポリリン酸トリエチルアンモニウム溶液を065Mトリエチルアンモニウム、pH62を有するスクロース8硫酸トリエチルアンモニウム溶液に換え;100nmの代わりに押し出し80nmポリカーボネート膜フィルターを使用したこと以外は、実施例29のように調製したリポソームトポテカン製剤を使用した。ガウス近似での準弾性光散乱法によって決定した体積加重のリポソームの大きさは、951±196nmであった;薬物脂質比は3691±183mgmmolリン脂質であった。2匹の群の5~6週齢雌SwissWebsterマウスに、注射当たり2mgkgトポテカン塩基の用量から開始し、378mgkgの用量までそれぞれ次の群には係数18で増加させながら、1週間に1回のスケジュールで遊離トポテカンまたはリポソームトポテカンを3回静脈内注射した。イムノリポソームトポテカンは本試験には含めなかった。動物体重および一般健康状態を毎日モニターした。処置開始から10日の期間内の、群内の2匹の動物のいずれかの任意の時点における20を超える進行性体重減少または自然死を、中毒量を示すものと見なした。動物の死亡および体重データより、遊離トポテカンのMTDは117~21mgkg、およびリポソームトポテカンのMTDは20~36mgkgの範囲に入ると決定された。第2の試験では、マウスに、遊離トポテカン、リポソームトポテカン、またはF5イムノリポソームトポテカンを、20mgkgまたは12mgkgから、確立されたMTD区間の上限範囲の次の用量に到達するまでそれぞれ次の群には係数115で増加させた用量で注射した。いずれの動物において死亡も末期的病的状態ももたらさなかった最も高い用量をMTDと見なし、これは遊離トポテカンでは184mgkg、リポソームトポテカンでは30mgkg、およびイムノリポソームトポテカンでは30mgkgであることが判明した。したがって、リポソームトポテカンは遊離薬物よりも高い毒性を示した。実施例31BT474異種移植片モデルにおける0125~10xMTDの範囲のリポソームトポテカンの抗腫瘍効果本試験では、実施例30のトポテカンリポソームおよびF5イムノリポソームを使用した。実施例29のようにして、ヌードマウスにBT474皮下異種移植片を生じさせた。腫瘍細胞接種後18日目に、腫瘍を有する動物を、動物6匹群の処置群および動物8匹群の対照群にランダムに割り当てた。動物に、1xMTD、05xMTD、025xMTD、または0125xMTDの遊離トポテカンまたはリポソームトポテカンを、腫瘍接種後19日、23日、および27日目での3回の静脈内注射により投与した。対照群には生理食塩水を注射投与した。腫瘍の大きさおよび動物体重を、実施例29のようにモニターした。動物の体重測定値を得るには、動物の総重量測定値から腫瘍重量を減算した。MTDでの薬物製剤はすべて、抗腫瘍活性を示した。それぞれのMTDで、またはその同一の割合で投与した遊離薬物とリポソーム薬物の有効性には、有意な差は認められなかった。したがって、TEASOS勾配を用いる薬物のリポソーム封入により、抗腫瘍活性の約6倍の増加、および薬物毒性の同様の増加がもたらされた。動物体重の動学から、後に解決される一次的な体重減少を示したMTDでの遊離トポテカンによる処置を除いて、すべての処置に毒性がないことが明らかになった。実施例32スクロ8硫酸トリエチルアンモニウム捕捉法を用いて調製したトポテカンリポソームの調製および標的化インビトロ細胞毒性643mMTEA、pH57、モル浸透圧530mmolkgを有するTEASOSの捕捉溶液、および170mgmmolの薬物リン脂質比を使用し、概して実施例18の手順に従ってリポソームトポテカンを調製した。リポソームは、155mg薬物mmolリン脂質;90の充填効率、および粒径105nmを有した。これらのリポソームを、総じて実施例19に記載した通りに、約30scFvリポソームで、F5PEGDSPE複合体のミセル溶液と共に60°Cで1時間インキュベートした。SepharoseCL4Bを用いてSECにより抗体結合リポソームを分離し、HBS65HEPES緩衝生理食塩水中に製剤化した。抗HER2scFvの結合過程において、検出可能な薬物脂質比の変化は認められなかった。癌細胞によるトポテカン製剤の取り込みを、以下のようにして決定した。HER2過剰発現ヒト乳腺腺癌細胞を、150000細胞ウェルで24ウェル細胞培養プレートにプレーティングし、一晩順化させた。細胞を、リポソーム濃度01mMおよび001mMの、完全増殖培地中のF5標的化および非標的化リポソームトポテカンと共に、37°Cで4時間インキュベートした。細胞をハンクス平衡塩類溶液で4回リンスし、01TritonX100‐70酸性イソプロパノール混合物110で可溶化し、ウェル当たりの細胞結合トポテカンの量を蛍光光度法により測定した。結果を表22に要約する。標的化リポソームは、非標的化リポソームよりも100~300倍多くの薬物を標的細胞に送達した。表22SKBr3乳癌細胞によるリポソームトポテカンの取り込みSKBr3乳癌細胞に対するこれらのトポテカン製剤の細胞毒性を、実施例27に記載した通りに決定した。SKBr3細胞を5000細胞ウェルで96ウェルプレートに播種し、一晩順化させ、細胞増殖培地中で、逓増的濃度の遊離トポテカン、リポソームトポテカン、またはF5イムノリポソームトポテカンと共に37°Cで4時間インキュベートした。薬物を含む培地を除去し、薬物を含まない培地中で細胞を72時間増殖させた。ウェル当たりの生細胞数をチアゾリルブルーテトラゾリウムアッセイを用いて測定し、対照細胞の生細胞数のとして表した。結果を図10に示す。トポテカンイムノリポソームは、非標的化トポテカンリポソームおよび遊離トポテカンよりも細胞毒性が高かった。実施例33異なる大きさのトポテカンリポソームのインビボ安定性TEAPnを含むリポソームを、100nmポアサイズポリカーボネート膜を12回通す、または加えて50nmポアサイズポリカーボネート膜を12回通す押し出しにより、実施例22のように調製した。トポテカンを150μgμmolリン脂質の比で添加した。充填は湯浴中58°Cで45分間行い、その後氷上で急冷した。50nmおよび100nmで押し出したリポソームの充填効率は、それぞれ12680±1924μgTPTμmolPLおよび14848±1026μgTPTμmolPLであった。3匹の群の雌SwissWebsterマウスに、5mgTPTkgの用量で、2つのLsTPT製剤のうちの一方を静脈内注射した。6時間後マウスを屠殺し、血液を回収した。実施例22に記載した通りに、血漿をTPTおよびリポソーム脂質について解析した。結果を表23に示す。表23TEAPn捕捉法を用いて充填した異なる大きさのLsTPTのインビボ安定性実施例346エリプチシンの合成およびリポソーム封入WerbeletalJMedChem1986v29p13211322による手順に基づく2段階方法で、エリプチシンから6エリプチシンを調製した。エリプチシン塩基5014mgを、乾燥ジメチルホルムアミド5ml中、水素化ナトリウム約100mgと共に室温で30分間撹拌した。この混合物に、乾燥DMF2mLにNブロモプロピルフタルイミド678mgを溶かした溶液を滴下した。紫色の反応混合物をアルゴン下で一晩撹拌し、水1mLで処理し、水60ml中に注いだ。この混合物を塩化メチレン25mLで2回抽出し、抽出物を無水硫酸ナトリウム上で乾燥させ、中性アルミナの層に通した。アルミナ層を塩化メチレン10mLで2回リンスし、混合した濾液とリンス液を真空中で乾燥状態にした。生成物を無水エタノール20mlおよび無水ヒドラジン2mlと共に室温で一晩撹拌した。得られたスラリーを真空下で濾過し、黄色の濾液を02NNaOH50mLで希釈し、二分割量のクロロホルムで抽出した。クロロホルム抽出物をNa2SO4上で乾燥させ、真空中で乾燥状態にした。粗生成物をシリカ60カラムでクロマトグラフにかけ、乾燥トリエチルアミンで飽和したクロロホルムメタノール混合物を用いて均一濃度で溶出した。未反応のエリプチシンに次いで2番目の黄色いバンド中に溶出された画分が、所望の化合物を約30の収率で含むことが示された。1HNMRにより構造を確認した。TLC:Rf029~031。エリプチシン、Rf081~083。得られた化合物は、無水エタノール中に溶解し、乾燥イソプロパノール中の6NHCl溶液で滴定して二塩酸塩に変換した。6APE二塩酸塩のオレンジ色の結晶を濾過除去し、エーテルでリンスし、真空中で乾燥させた。二塩酸塩の収率は86であった。DSPC、コレステロール、およびPEGDSPEのストレートな脂質フィルムを、05MTMA、pH56のポリリン酸トリメチルアンモニウムの溶液中で60°Cで水和させ、その後迅速な凍結および融解を6サイクル行い、2枚重ね50nmポアサイズポリカーボネートフィルターを通して10回押し出すことにより、リポソームを調製した。封入されたなかったTMAPnは、SepharoseCL4Bカラムを用いてHEPESデキストロースで溶出して除去した。リポソームの大きさは857±321nmであった。濃縮した6APE溶液を100μgAPEμmolリン脂質の薬物リン脂質比でTMAPn含有リポソームに添加し、混合物を58°Cで45分間インキュベートし、氷上で15分間急冷した。封入されなかった薬物は、SephadexG75カラムにてHEPESデキストロース緩衝液で溶出するゲルクロマトグラフィーにより除去した。次いで、リポソームに捕捉されたAPEを実施例71のように分光光度法によって定量化し、リポソームリン脂質を実施例70の抽出アッセイを用いて測定した。薬物封入は事実上定量的であった。実施例35HER2標的化イムノリポソーム6APEの調製およびインビトロにおけるHEP2過剰発現BT474乳癌細胞に対する6APE製剤の細胞毒性上記の実施例34のようにして、6APEを封入したリポソームを調製した。6APEを封入した抗HER2イムノリポソームは、実施例19の方法によりLsAPEから調製した。実施例27のMTTに基づく細胞生存度アッセイを用いて、溶液、LsAPE、またはHER2標的化F5ILsAPEとして送達した6APEのHER2過剰発現ヒト乳癌細胞に対する細胞毒性を測定した。細胞を薬物含有培地に6時間曝露し、その後薬物を含まない培地中で3日間インキュベートした。結果を図15に示す。遊離APEのIC50は026μgAPEmlであり、F5ILsAPEのIC50は0756μgAPEmlであり、また非標的化LsAPEのIC50は510μgAPEmlであった。標的化リポソーム6APEと非標的化リポソーム6APEの間には活性に675倍の差があり、かなりの標的化送達効果が示された。実施例366APEのEGFR標的化イムノリポソーム製剤およびインビトロにおける癌細胞に対する細胞毒性6APE充填リポソームを実施例34に記載した通りに調製した。EGFR標的化イムノリポソームは、以下のようにEGFR特異的Fab抗体断片を結合して調製した。EGFR特異的IgGMAbC225、ImcloneSystemsをペプシンで消化して、2断片を生成した。精製した2断片を、10~20mM2メルカプトエチルアミンで37°Cで15分間処理して還元し、SephadexG25を用いたゲル濾過によりFab断片を精製した。反応性チオール基の存在は典型的には、タンパク質1分子当たり約09チオール基であった。pH62~65および14のタンパク質リンカーモル比の水溶液中で、C225Fabを両親媒性リンカーMalPEGDSPEに、室温で2~4時間、または4~6°Cで一晩共有結合させて、30~50のタンパク質収率でC225FabPEGDSPE複合体を得た。HBS65緩衝液で溶出する3アガロース4ポリアクリルアミドビーズゲルでのサイズ排除カラムクロマトグラフィーにより、このミセル形成複合体を未反応のタンパク質から分離した。複合体は空隙容量画分に回収された。C225FabPEGDSPEを有するこのリポソームを、30mgC225タンパク質mmolリポソームリン脂質の比で薬物充填リポソームと共に60°Cで30分間インキュベートし、氷上で15分間急冷し、さらに同様にHBS65緩衝液で溶出するSepharoseCL4Bカラムでのゲルクロマトグラフィーによりイムノリポソームを精製して、イムノリポソーム6APEを形成した。MDAMB468EGFR過剰発現ヒト乳癌細胞および低いEGFR発現を有するMCF7ヒト乳癌細胞を、供給者の推奨する増殖培地で培養し、これらの細胞に対する遊離6APE、リポソーム6APE、および抗EGFRイムノリポソーム6APEの細胞毒性を、実施例27の方法に従って試験した。細胞を薬物含有培地と共に6時間インキュベートし、その後薬物を含まない培地中で3日間インキュベートした。結果を図16に示す。MDAMB468細胞では、遊離APEのIC50は約01μgmlであり、C225ILsAPEのIC50は約09μgmlであった。MCF7細胞では、遊離6APEのIC50は約05μgmlであり、C225ILsAPEのIC50は約14μgmlであった。両細胞株におけるLsAPEのIC50は、30μgmlであった。したがって、EGFR標的化6APE充填イムノリポソームは、EGFR過剰発現MDAMB468乳癌細胞において抗原特異的細胞毒性活性を示したが、EGFRを過剰発現しないMCF7乳癌細胞ではそのような活性を示さなかった。MCF7細胞では、標的化および非標的化6APEリポソームは、同等の活性であった。実施例37ラットにおけるリポソーム6APEの薬物動態TEAPn溶液を捕捉し、DSPC、コレステロール、およびPEGDSPEの脂質組成を有するリポソームを、上記の実施例11のように調製した。脂質のエタノール溶液を10倍量のTEAPn水溶液と60°Cで混合し、2枚重ね80nmポアサイズポリカーボネート膜を通して10回押し出した。封入されなかったTEAPnは、SepharoseCL4Bカラムを使用しMESデキストロースで溶出して除去した。リポソームの大きさは、QELSにより923±233nmであった。非交換性放射性脂質標識3HCHEを、脂質マトリックス中に05mCimmolリン脂質で含めた。実施例34に記載した通りに、リポソームに6APEを充填した。薬物動態試験は、実施例9の手順に従った。雌SimAlbioラットに、10mg6APEkgの用量で静脈内注射した。所定の時点で血液を採取し、血漿を蛍光光度法により6APEについて解析した。血漿の一定分量を90イソプロパノール水溶液01NHCl1~2mLと混合し、実施例71のように蛍光により6APEを定量化した。脂質は、3HCHE放射能シンチレーション計数により定量化した。結果を図17に示す。薬物の血中半減期は137時間であり、リポソーム脂質のt12は166時間であった。リポソームからの薬物放出の半減期は779時間であり、顕著な封入安定性が実証された。実施例382エチルエリプチシニウムの合成およびリポソーム封入2エチルエリプチシニウムクロリドは、トリエチルアミン存在下において、メタノール中でエリプチシンを2エチルクロリドでアルキル化することによって調製される抗癌エリプチシン誘導体である。捕捉されたTEAPnを含むリポソームを、実施例37に記載した通りに調製した。5mMHEPESNa、5デキストロース、pH74中、2DAE2HClを、100μgμmolの2DAEリン脂質比でTEAPnリポソームと共にインキュベートした。充填された薬物の量は、882μgAPEμmolPLであった。実施例39ラットにおけるリポソーム2DAEの薬物動態実施例37のようにして、リポソーム2DAEの血中薬物動態を試験した。2DAEのt12は178時間であり、リポソーム脂質マトリックスのt12は182時間であった。血中でのリポソームからの薬物放出の半減期は、t12677時間であった。したがって、このリポソームは血流中で薬物漏出に対して極めて安定であった。実施例40TEPPn法を用いるビノレルビンのリポソーム内への充填、pHの影響0608MTEA、065Mリン酸基、pH61、およびモル浸透圧531mmolkgのTEAPn溶液、および2枚重ね100nmポアサイズポリカーボネート膜を通す脂質懸濁液の15回の押し出しを使用し、実施例11のようにエタノール注入法によりリポソームを調製した。得られたリポソームの大きさは、QELSにより1083±171nmであった。二酒石酸ビノレルビン10mgmLUSPという保存溶液形態のビノレルビンを、5mMHEPESNa、5デキストロース、pH65水溶液中のリポソームに、350μgμmolの薬物リン脂質比で添加し、1~5NNaOHを用いてpHを所望の値に調整し、混合物を58±2°Cで30分間インキュベートした。次いで、混合物を氷上で15分間冷却し、封入されなかった薬物をSephadexG75ゲル濾過クロマトグラフィーにより、HBS65緩衝液で溶出して除去した。次いで、精製されたリポソームの一定分量を酸性イソプロパノール中で可溶化し、270nmで分光光度法によりビノレルビンについて解析した。リポソームリン脂質は、メタノールクロロホルム抽出後に、Bartlettのリン酸アッセイを用いて定量化した。充填後に算出された薬物脂質比を表24に示す。ビノレルビンの充填は定量的であり、試験した範囲のpHには依存しなかった。表24外部緩衝液の様々なpH値におけるTEAPnを捕捉したリポソーム内へのビノレルビンの充填実施例41様々な薬物脂質比でTEAPn法により調製したリポソームビノレルビン:封入効率およびマウスにおけるインビボ安定性脂質マトリックス中に15mCimmolリン脂質の3HCHEを含めること以外は実施例40に従って、TEAPn溶液を捕捉したリポソームを調製した。リポソームの大きさは、QELSにより985±343nmであった。5mMHEPESNa、5デキストロース、pH65の水性緩衝液中で、150~450mgVRBmmolの薬物リン脂質比でリポソームを二酒石酸ビノレルビンUSPと混合し、58±2°Cで30分間インキュベートした。薬物の添加後に、pH調整は行わなかった。ビノレルビン充填リポソームを単離し、実施例40のように薬物およびリン脂質について解析した。3匹の群の5~6週齢雌SwissWebsterマウスに、5mgVRBkgの用量でLsVRBPnを静脈内注射した。脂質用量は充填の程度によって異なり、上記の計算による薬物脂質比から決定することができる。注射の8時間後または24時間後に動物に麻酔をかけ、放血させ、004EDTAを添加した既知量のPBSを含む秤量済みのチューブ中に血液を氷上で回収した。血液細胞を遠心分離によって分離し、3HCHE放射能シンチレーション計数によりリポソーム脂質に関して、および以下のようにHPLCを用いてビノレルビンに関して上清を解析した。試料にビンブラスチンを添加し、ジエチルエーテルで抽出し、蒸発させ、残渣を50mM酢酸トリエチルアンモニウム水溶液およびアセトニトリルからなる移動相に溶解した。試料を、C18ガードカラムが先行するC18逆相シリカカラムに添加した。カラムを、10ml分の流速で、上記の移動相により均一濃度で溶出した。280nmで吸光度検出器を用いてVRBを検出した。VRBおよびビンブラスチンの典型的な保持時間は、それぞれ91分および78分であった。結果を表25に示す。充填効率は薬物脂質比の増加に伴って、150mgmmolでの事実上の100から450mgmmolでの約66まで減少した。250mgビノレルビンmmolリン脂質を超える比で二酒石酸ビノレルビンを添加すると、充填効率の減少をもたらすリポソーム懸濁液の実質的な酸性化が起こることが留意された。したがって、薬物充填段階時のpH調製の必要性が確証された。8時間後に血中に検出されたリポソームマトリックスの量は、注射した脂質の絶対量との明白な関係はなく、注射用量の304±66~386±52idであった。24時間後、血中に検出される脂質マトリックスは、なお64ID~148IDであった。8時間後に封入されて残存した薬物の量は、37から63まで様々であった。しかし、注射から24時間後には、薬物レベルは、使用した分析法の検出限界未満に減少した。表25TEAPn法を用いて様々な薬物脂質比で調製したリポソームビノレルビンの封入効率およびインビボ薬物保持薬物保持データは、平均値±SDである。実施例42様々な薬物脂質比におけるTEASOS法を用いたリポソーム内へのビノレルビン充填TEAPn溶液の代わりに065MTEA、pH54、モル浸透圧521mmolkgを有するTEASOS溶液を使用し、リポソームを80nmポアサイズポリカーボネート膜を通して押し出すこと以外は実施例40のようにして、薬物充填のためのTEASOSリポソームを調製した。リポソームの大きさは、QELSにより866±129nmであった。5mMHEPESNa、5デキストロース、pH65水溶液中のリポソームに、VRBを様々な薬物リン脂質比で添加し、続いて混合物を60°Cで30分間インキュベートした。次いで、VRB充填リポソームを単離し、実施例40のように解析した。VRBリポソームにおいて算出された薬物脂質比を表26に示す。顕著なことには、高分子アニオン支援の充填とは対照的に、ポリアニオン化糖を有するリポソーム内へのビノレルビン充填は、450mgVRBmmolリン脂質までは薬物脂質比とは無関係に事実上定量的であり、550mgVRBmmolリン脂質でわずかに減少するにすぎなかった。表26リポソーム内へのビノレルビン充填の薬物脂質比への依存実施例43TEAPn法によりビノレルビンを充填したHER2標的化イムノリポソームの調製、ならびにラットにおけるHER2標的化および非標的化ビノレルビンリポソームの比較血中薬物動態抗HER2scFvF5PEGDSPE複合体は、実施例19の通りに調製した。HER2標的化ビノレルビンイムノリポソームは、20mMHEPESNa、135mMNaCl、pH65水性緩衝液中、非標的化ビノレルビンリポソームを15mgmmolのタンパク質リン脂質比でF5PEGDSPE複合体と共に60°Cで30分間インキュベートすることにより調製した。取り込まれなかったF5複合体は、同じ緩衝液で溶出するSepharose4Bカラムでのゲルクロマトグラフィーにより除去した。非標的化リポソームおよびHER2標的化リポソームを、雌Albinoラットに5mgVRBkgの用量で静脈内投与した。様々な時点で、実施例9に記載した通りに血液を回収し、実施例41のようにVRBおよびリポソーム脂質について解析した。MICROSOFTEXCEL表計算TREND関数を用いて単一指数関数的速度論への最良適合を見出すことにより、リポソーム脂質の血中半減期および50薬物放出時間を、それぞれ脂質濃度時間プロットまたは薬物脂質比時間プロットから計算した。結果から、標的化および非標的化ビノレルビンリポソームはいずれも、約121時間の脂質半減期および約43時間の50薬物放出時間を有して、同一の薬物および脂質薬物動態を有することが示された。実施例44アンモニウム塩および置換アンモニウム塩を用いて調製したビノレルビンリポソームの調製および比較インビボ安定性実施例4の方法に従って、分子量10000を有するデキストラン硫酸から、それぞれ124Mアンモニア水またはストレートなトリエチルアミンを用いて滴定することにより、pH58、065MNH4、モル浸透圧390mmolkgを有するデキストラン硫酸アンモニウム溶液、およびpH60、065MNH4、モル浸透圧465mmolkgを有するデキストラン硫酸トリエチルアンモニウム溶液を調製した。硫酸アンモニウム水溶液325mMpH51、モル浸透圧703mmolkgは、分析等級の硫酸アンモニウムから調製した。3つの溶液はすべて、総カチオン含量の1未満のNaを含んでいた。これらの溶液を捕捉するリポソームを、実施例41のエタノール混合押し出し法を用いて調製した。15mCimmolリン脂質の放射性脂質標識3HCHEを脂質マトリックス中に含めた。押し出し段階は、2枚重ね01μmポリカーボネート膜の10回の通過からなった。VRBを5mMHEPESNa、5デキストロース、pH65中のリポソームに350mgmmolの薬物リン脂質比で添加し、1NNaOHを用いてpHを65に調整し、混合物を58~60°Cで30分間インキュベートした。次いで反応物を氷上で15分間冷却し、封入されなかった薬物をSephadexD75ゲル濾過クロマトグラフィーにより20mMHEPESNa、135mMNaCl水溶液、pH65で溶出して除去した。精製されたビノレルビン充填リポソームを、分光光度法でVRBについて、およびBartlettのリン酸アッセイを用いてリン脂質について解析した。リポソーム脂質および薬物の血中薬物動態を、実施例43のようにラットにおいて試験した。結果を図19~20および表27に示す。デキストラン硫酸トリエチルアンモニウムを用いて充填したリポソームを、デキストラン硫酸のアンモニウム塩を用いて充填したリポソームと比較した。予期せぬことに、トリエチルアンモニウム塩を用いて充填したリポソームは、アンモニウム塩を用いて充填したリポソームよりもはるかに安定性が高かった。リポソーム担体自体の薬物動態は3つの異なる製剤で同様であり、したがって主に使用した脂質組成に依存した。デキストラン硫酸トリエチルアンモニウムを用いて充填したLsVRBからのビノレルビンの漏出は、デキストラン硫酸アンモニウムを用いて充填したリポソームからの漏出よりも約3倍遅かった。硫酸アンモニウムを用いて充填したリポソームは、最も速い薬物漏出速度を有した。表27捕捉されたアンモニウム塩および置換アンモニウム塩を用いるリポソーム内への薬物封入の比較インビボ安定性実施例45様々な大きさのビノレルビン充填リポソームの調製およびインビボ安定性スクロース8硫酸トリエチルアンモニウムの溶液を捕捉した3HCHE標識リポソームを、実施例11のエタノール混合押し出し法により調製した。押し出し段階は、005、008、または01μmのポアサイズを有する2枚重ねポリカーボネート膜の15回の通過を含んだ。ビノレルビンの充填、ビノレルビンリポソームの単離、およびリポソームの特徴づけは、実施例40の方法に従った。雌Albinoラットを用いて、リポソームインビボ安定性について試験した。リポソーム脂質および薬物の薬物動態を、実施例43の通りにラットにおいて試験した。結果を図21、図22、および以下の表28に示す。005、008、および01μmポリカーボネートフィルターを通して押し出したリポソームを比較したところ、同様の薬物およびリポソーム担体薬物動態、ならびに同程度の内容物漏出を有することが示された。血中でのリポソームからの薬物放出は、24時間を優に上回り、約40~80時間の50放出時間によって特徴づけられた。表28ビノレルビンリポソームの特徴づけ実施例46TEASOS捕捉法を用いたHER2標的化ビノレルビンリポソームの調製、ならびにラットにおけるHER2scFv標的化および非標的化イムノリポソームビノレルビンの薬物動態TEAPn溶液に換えて実施例45のTEASOS溶液を使用すること以外は実施例43に記載した通りに、リポソームを調製し、350mgmmol薬物リン脂質比でビノレルビンを充填し、解析した。押し出し段階は、008μmポアサイズポリカーボネートリルターの15回の通過を含んだ。リポソームの大きさは、QELSにより950±260nmであった。このビノレルビンリポソームからF5scFv結合抗HER2ビノレルビンイムノリポソームを調製し、HER2標的化および非標的化リポソームビノレルビンのリポソーム脂質および薬物の血中薬物動態を、実施例43に記載した通りにラットにおいて試験した。F5ILsVRBおよびLsVRBそれぞれについて、リポソーム脂質の循環半減期は114時間および103時間であり、50薬物放出時間は309時間および303時間であった。したがって、LsVRBおよびF5ILsVRBの脂質および薬物の薬物動態は非常に近似しており、scFvPEGDSPE複合体の導入が担体自体の排除にも影響を及ぼさず、また循環時の担体からの薬物漏出の増加も生じないことが示された。実施例47ポリの非イオン性脂質誘導体を含むビノレルビンリポソームの調製および薬物動態特性合成C20セラミドのメトキシPEG誘導体は、NorthernLipidsInc、カナダから入手した。メトキシPEGジステアロイルグリセロールは、NOFCorp、日本から入手した。モル比3203のDSPC、コレステロール、およびPEG脂質の脂質組成を有し、TEASOS溶液を捕捉したリポソームを、実施例11のエタノール混合押し出し法によって調製した。押し出し段階は、ポアサイズ02μmを用いた2回およびポアサイズ008μmを用いた10回の、2枚重ねポリカーボネート膜フィルターの2通りの通過を含んだ。リポソームに350mgmmolの薬物リン脂質比でビノレルビンを充填し、大きさ、薬物、および脂質濃度によって特徴づけ、それらの薬物動態を実施例46のようにラットにおいて試験した。いずれの製剤も、以下の表29に示すように、脂質マトリックスの長期の循環時間を示し、またインビボにおける血中で24時間後に薬物の少なくとも50が封入されて残存して、インビボにおける薬物の徐放を示した。表29様々なPEG脂質を有するビノレルビンリポソームの特徴づけ注目すべきは、これらリポソームのPEG化の増加は、総脂質の約03molという低いPEG化を有する大きさの一致する類似のリポソームと比較して、リポソーム血中循環寿命に対して実際には効果がなかった。実施例48HER2標的化リポソームビノレルビンの調製、ならびにインビトロでの遊離、HER2標的化、および非標的化リポソームビノレルビンのMDAMB453細胞に対する細胞毒性pH60および350μgビノレルビンμmolリン脂質での薬物充填を用いて、実施例42のように、ビノレルビン充填リポソームを調製した。抗HER2イムノリポソームビノレルビンは、3HCHEを添加しないこと以外は上記の実施例19および42に記載した通りに、このリポソームをF5PEGDSPE複合体と共にインキュベートすることで形成した。遊離ビノレルビンは、二酒石酸ビノレルビン10mgml溶液USPを細胞培養液中に希釈して調製した。MDAMB453は、HER2受容体を中程度に過剰発現するヒト乳腺腺癌細胞である。細胞を10000細胞ウェルの密度で供給者の推奨する増殖条件下で96ウェルマイクロタイタープレートにプレーティングし、薬物製剤を003~01mgmlから開始して一連の13段階の希釈物として添加すること以外は実施例27に記載した通りにして、遊離薬物、非標的化リポソームビノレルビン、またはHER2標的化イムノリポソームビノレルビンとして送達されるVRBのMDAMB453細胞に対する細胞毒性を決定した。細胞生存度のデータを薬物濃度に対してプロットし、細胞生存度を50まで減少させるのに必要な薬物濃度をグラフから推定した。F5標的化ビノレルビンリポソームのIC50は遊離薬物のIC50に近く、非標的化リポソームのIC50よりも実質的に低かった。このことから、薬物の癌細胞特異的標的化送達の結果として37倍の活性増加が示された。実施例49インビトロにおける遊離、HER2標的化、および非標的化リポソームビノレルビンのCaLu3細胞に対する細胞毒性前実施例のリポソームおよび方法を用いて、遊離ビノレルビン、LsVRB、およびF5ILsVRBの細胞毒性を、HER2過剰発現ヒト非小細胞肺癌細胞CaLu3において試験した。細胞は、5CO2の存在下で、10ウシ胎児血清を添加したRPMI1460培地で培養した。結果を図26に示す。遊離VRBのIC50は12μgmlであり、F5ILsVRBのIC50は10μgmlであり、また非標的化LsVRBのIC50は50μgmlであった。これにより、細胞への標的化送達の機能として、リポソーム封入薬物活性の5倍の増加が示される。実施例50インビトロでの遊離、HER2標的化、および非標的化リポソームビノレルビンのSKBr3細胞に対する細胞毒性細胞を、10ウシ胎児血清を添加した改変McCoy5A培地で5CO2の存在下にて培養し、5000細胞ウェルの密度でプレーティングし、薬物を細胞と共に6時間インキュベートすること以外は実施例48のリポソームおよび方法を用いて、遊離ビノレルビン、LsVRB、およびF5ILsVRBの細胞毒性をHER2過剰発現ヒト乳癌細胞SKBr3において試験した。結果を図27に示す。遊離VRBのIC50は028μgmlであり、F5ILsVRBのIC50は017μgmlであり、また非標的化LsVRBのIC50は08μgmlであった。これにより、標的化送達の機能として、薬物活性の47倍の増加が示される。実施例51マウスのHT29ヒト結腸癌異種移植片におけるリポソームビノレルビンのインビボ抗腫瘍効果スクロース8硫酸トリエチルアンモニウムの水溶液中で濃縮エタノール溶液を水和させ、その後ポリカーボネート膜を通して繰り返し押し出し、リポソーム外のポリアニオン塩を除去して、ジステアロイルホスファチジルコリン、コレステロール、およびPEGDSPEから小さな単層小胞リポソームを調製し、実施例42に記載した通りに、等張緩衝液pH65中、325mgVRBmmolリン脂質の薬物脂質比でリポソームと共に60°Cでインキュベートすることによりビノレルビンを充填した。雌BALBcホモ接合性ヌードマウスの腹側部に、1x106個のHT29ヒト結腸癌細胞を皮下注射した。平均腫瘍径が5~8mmに到達した、腫瘍接種後16日目から開始して、マウスを動物6匹の3つの群にランダムに分割し、尾静脈から3日ごとに全部で4回注射をして、5mgkg用量の遊離またはリポソームビノレルビンで処置した。対照群では、マウスを等量の生理食塩水で処置した。各マウスの腫瘍の大きさをノギスで測定し、式:x22を用いて腫瘍体積を計算した。処置に関連する毒性を評価するため、週に2回、動物の体重も測定した。リポソームビノレルビンは、遊離ビノレルビンよりもHT29腫瘍の増殖の抑制においてはるかに有効であり、腫瘍の退行をもたらすことが示されたが、遊離薬物群では腫瘍は常に増殖し続けた。処置過程において動物体重にはほとんど変化がなく、処置が十分に許容されること、およびリポソーム化が薬物毒性を増大させないことが示された。実施例52C26同質遺伝子的マウス結腸癌腫瘍に対するリポソームビノレルビンのインビボ抗腫瘍効果リポソームビノレルビンおよび遊離ビノレルビンは、実施例48のように調製した。雄BALBcマウスに、2x105個のC26マウス結腸癌細胞を皮下接種した。平均腫瘍径が5~8mmに到達した注射後17日目に、マウスを動物5匹群の6つの群にランダムに分割した。腫瘍を有するマウスに、6mgkg、8mgkg、または12mgkgの遊離ビノレルビン、および4mgkgまたは6mgkgのリポソームビノレルビンを、3日ごとに全部で4回尾静脈注射した。対照群では、マウスに等量の生理食塩水を注射した。腫瘍の大きさおよび動物体重については、実施例51に従った。リポソームビノレルビンは4mgkgでさえも、12mgkgの遊離薬物よりも腫瘍増殖の減少においてはるかに効果的であった。処置過程における動物体重はほとんど変化を示さず、リポソームビノレルビンの毒性が遊離薬物の毒性と比較して増加していないことが示された。実施例53マウスのBT474ヒト乳癌異種移植片腫瘍に対するHER2標的化リポソームビノレルビンのインビボ抗腫瘍効果:充填対イオンの効果3HCHEを添加しないこと以外は、それぞれ実施例41のTEAPn法および実施例42のTEASOS法により、995±102nmの大きさのVRB充填リポソームを調製した。350mgmmolの薬物リン脂質比でVRBを充填した。実施例43に記載したようにこれらのリポソームをF5PEGDSPE複合体と共にインキュベートして、HER2標的化リポソームビノレルビンを形成した。実施例10のようにして、ホモ接合性ヌードマウスにBT474HER2過剰発現ヒト乳癌異種移植片を生じさせた。腫瘍が約200mm3の大きさに到達した腫瘍細胞接種後25日目に、マウスを動物8匹群の4つの群にランダムに割り当て、週に1回全部で3回静脈内注射して、5mgkg用量の遊離VRB、対イオンとしてPnを有するF5ILsVRB、または対イオンとしてSOSを有するF5ILsVRBで処置した。対照群には等量の生理食塩水を投与した。腫瘍および動物体重を、実施例10のようにモニターした。スクロース8硫酸を用いて充填したHER2標的化リポソームビノレルビンは、ポリを用いて充填した同じ標的化構築物よりも腫瘍増殖の減少において顕著に有効であり、いずれのイムノリポソーム調製物も、5mgVRBkgで投与した場合に遊離ビノレルビンよりもはるかに有効であった。薬物処置したマウスは体重変化をほとんど示さず、処置が十分に許容されることが示された。実施例54マウスのBT474ヒト乳癌異種移植片腫瘍に対するHER2標的化リポソームビノレルビンのインビボ抗腫瘍効果:PEG化の効果実施例48に従って、モル比320015または3203のDSPC、コレステロール、およびPEG分子量2000を有するPEGジステアロイルグリセロールの脂質マトリックスを、エタノール溶液法によってスクロース8硫酸トリエチルアンモニウム水溶液中で水和させ、その後実施例48に従って膜を押し出しことで、モル比32のDSPCおよびコレステロールのリポソームを調製した。350mgmmolの薬物リン脂質比で、VRBをリポソーム内に充填した。実施例43に記載したようにこれらのリポソームをF5PEGDSPE複合体と共にインキュベートして、F5イムノリポソームビノレルビンを形成した。BT474異種移植片を有するヌードマウスを作製し、実施例53のように、5mgkgの遊離VRB、F5ILsVRB05PEG、またはF5ILsVRB10PEGを静脈注射してマウスを処置した。図34に示すように、非イオン性PEG脂質誘導体PEGDSGを備えた、PEG化の高いF5ILsVRBは、PEGDSG量の少ないF5ILsVRBよりも腫瘍増殖の減少において顕著に有効であり、いずれの調製物も遊離薬物よりも活性が高かった。実施例55マウスのU87ヒト脳腫瘍異種移植片腫瘍に対するEGFR標的化リポソームビノレルビンのインビボ抗腫瘍効果実施例42に従って、065MTEASOS溶液を封入したリポソームを調製し、VRBを充填した。実施例36に記載した通りに、VRBリポソームを抗EGFR抗体Fab断片のPEGDSPE複合体と共にインキュベートして、抗EGFRイムノリポソームVRBを調製した。雄NCRnunuマウスの腹側部に、全量で150μlの増殖培地に懸濁した1x107個のU87ヒト神経膠芽腫細胞を皮下接種した。腫瘍の平均の大きさが250mm3に到達した時点で、マウスを動物10~12匹の4つの群にランダムに分割した。5mgVRBkg用量の遊離VRB、非標的化LsVRB、またはC225FabILsVRBを、週に1回、全部で3回静脈内注射して、マウスを処置した。対照群には等量の生理食塩水を投与した。腫瘍の大きさおよび動物体重を、実施例10のようにモニターした。C225FabILsVRBは、等用量の非標的化リポソームビノレルビンまたは遊離ビノレルビンのどちらよりも、EGFR過剰発現ヒト脳腫瘍異種移植片腫瘍の増殖の抑制において顕著に有効であった。実施例56硫酸トリエチルアンモニウム法を用いてリポソーム内に封入されたドキソルビシンの調製および薬物動態実施例2に記載した通りに、様々な脂質マトリックス組成を有するリポソームを形成した。NグルタリルDSPEは、AvantiPolarLipids、米国、アラバマ州によった。回転蒸発によりクロロホルム中の脂質溶液からストレートな脂質フィルムを形成し、微量な揮発物を真空下で除去し、脂質フィルムを硫酸トリエチルアンモニウム溶液中で水和させ、6サイクルの迅速な凍結および融解に供し、2枚重ね01μmポアサイズポリカーボネートフィルターを通して10回、および2枚重ね005μmポアサイズポリカーボネートフィルターを通して10回押し出した。血液試料中の脂質マトリックスを定量化するため、05~15mCimmolリン脂質の3HCHEを脂質マトリックス中に含めた。実施例2に従って、TEASO4溶液を捕捉したリポソームにドキソルビシンを充填した。HEPES緩衝生理食塩水中のリポソームを、塩酸ドキソルビシンと共に60°Cで45分間インキュベートし、その後氷上で急冷し、封入されなかったドキソルビシンをゲルクロマトグラフィーにより除去した。分光光度法によりドキソルビシンについてアッセイし、Bartlett法によりリン脂質についてアッセイした。得られたリポソームの特性を以下の表30に要約する。表30様々な脂質組成のリポソームドキソルビシンの特性DSPCCholPEGDSPE27203の脂質組成を有するこのドキソルビシン含有リポソームの血中薬物動態を、実施例9に記載した通りに、5mgドキソルビシンkgの用量を単回静脈内投与したラットにおいて試験した。リポソームは長い時間循環していた。安定なドキソルビシンリン脂質比から、この製剤が、48時間を超えても薬物の25未満しか失わずに、循環中の薬物漏出に対して際立って安定であることが示された。実施例57TEA硫酸法により調製したドキソルビシン充填リポソームおよび抗HER2イムノリポソーム:調製、およびHER2過剰発現ヒト乳癌異種移植片に対するインビボ抗腫瘍効果様々な脂質組成および特性を有するドキソルビシン充填リポソームを、実施例56に記載した通りに調製した。ドキソルビシン充填抗HER2イムノリポソームは、実施例19に記載した通りに、抗HER2scFvF5PEGDSPE複合体と共にインキュベートすることにより、ドキソルビシン充填リポソームから調製した。皮下ヒト乳癌異種移植片を有するNCRnunuマウスを作製し、週に1回の、5mgkg用量のリポソームまたは抗HER2イムノリポソームドキソルビシンで3週間処置し、腫瘍の平均の大きさが200mm3に到達した時点で、実施例29に記載したように腫瘍の進行および動物体重をモニターした。非標的化ドキソルビシンリポソーム製剤では、PEGDSPEを含まない、05molPEGDSPE、または10molPEGDSPEを含む脂質組成を試験し;F5イムノリポソームドキソルビシンでは、05molPEGDSPEおよび10molPEGDSPEを有する製剤を試験した。結果から、いずれのドキソルビシン処置も、腫瘍増殖の遅延に有効であることが実証された。接種後53日目の腫瘍の大きさに基づくと、全3つの非標的化リポソーム群内の腫瘍増殖抑制の差は統計的有意性を示さなかったが、イムノリポソームドキソルビシンは非標的化リポソームドキソルビシンよりも有意に有効であり、10PEGDSPE製剤は05PEGDSPEよりも有効であった。10PEGDSPEF5ILs群では、67の動物において腫瘍が1mm3以下まで退行し、05PEGDSPEF5ILs群では、9の動物しかそのように退行しなかった。対照群では、38~43日目に、腫瘍は15体重の許容可能な大きさの限界を上回った。表31インビボ抗腫瘍効果試験におけるリポソームドキソルビシン:リポソームの特性および処置の結果実施例58リポソームビンブラスチンの調製およびラットにおけるリポソームビンブラスチンの血中薬物動態TEASOS水溶液を充填し、995±102nmの大きさを有するリポソームを、実施例11の方法により、2枚重ね02μmポリカーボネート膜を通した2回および2枚重ね008μmポリカーボネート膜を通した10回の押し出しによって調製した。硫酸ビンブラスチンUSPの形態のビンブラスチンを、150mgmmolの薬物リン脂質比で添加した。薬物リポソーム混合物のpHを1NNaOHを用いて65に調整し、続いて混合物を60°Cで30分間インキュベートした。次いで、混合物を氷上で15分間冷却し、封入されなかった薬物をSephadexG75ゲル濾過クロマトグラフィーにより、5mMHEPESNa、135mMNaCl、pH65で溶出して除去した。次に、精製されたリポソームを、実施例70および71のように、分光光度法によりVBLについておよびBartlett法によりリン脂質について解析した。15mCimmolリン脂質の比率で、3HCHEを製剤中に含めた。リポソームビンブラスチンは、1524±120mgVBLmmolリン脂質を有した。雌Albinoラットにおける5mgVBLkg用量のリポソームビンブラスチンの血中薬物動態を、実施例9に記載した通りに試験した。血漿試料中のビンブラスチンは、実施例41に記載した通りに定量化した。ビンブラスチンリポソームは良好な循環寿命を示し、また24時間後に最初のビンブラスチン充填量の70を超える割合が封入されて残存して、リポソームからの薬物漏出に対して非常に良好な安定性を示した。封入薬物の50の放出を達成する注射後の時間は、406±12時間であると判明した。実施例59TEASOS法を用いてビンクリスチンを充填したリポソームの調製および充填効率に及ぼすpHの影響866±129nmの大きさ、モル比320015のDSPCCholPEGDSPEの脂質組成を有し、TEASOS水溶液を充填したリポソームを、実施例11の方法により、2枚重ね008μmポアサイズポリカーボネート膜を15回通過させる押し出し段階を用いて調製した。ビンクリスチンを、350μgビンクリスチンμmolリン脂質の薬物リン脂質比で硫酸ビンクリスチンとして、5mMHEPESNa、5デキストロース水性緩衝液中のリポソームに添加し、1NNaOHを用いてpHを表示の比率に調整し、混合物を60°Cで30分間インキュベートし、氷上で15分間冷却し、さらにSephadexG75ゲル濾過クロマトグラフィーによりHES65で溶出して、封入されなかった薬物からリポソームを分離した。次いで、精製されたリポソームを、酸性イソプロパノール中で可溶化した後に、265nmでの吸光度を用いる分光光度法によりビンクリスチンについて、およびBartlettのリン酸アッセイ法を用いてリン脂質含量について解析した。結果を以下の表32に示す。薬物充填はpH45~75の範囲で90を上回り、pH50~75では実際に定量的であった。薬物の充填後にpH調整を行わなかったリポソーム混合物中で観察されたpH35では、充填はかなり低かった。表32TEASOSを捕捉したリポソーム内へのビンクリスチン充填のpH依存性実施例60TEASOS法を用いてビンクリスチンを充填したリポソームの調製:充填効率に及ぼす薬物脂質比の影響実施例59のようにSOSTEA含有リポソームを調製し、実施例59の手順に従って、150~550μgビンクリスチンμmolリン脂質の薬物リン脂質比で硫酸ビンクリスチンをpH65にて充填した。次いで、封入されなかった薬物から精製したリポソームを、分光光度法によりVCRについて、およびBartlettのアッセイを用いてリポソームリン脂質について解析した。薬物充填効率は、試験したすべての範囲の薬物脂質比において90を上回り、150~450μgビンクリスチンμmolリン脂質の間で実際に定量的であった。表33様々な薬物脂質比でのTEASOS含有リポソーム内へのビンクリスチンの充填実施例61イムノリポソームビンクリスチンの調製、ならびにインビボにおける癌細胞に対するリポソームおよびイムノリポソームビンクリスチンの細胞毒性350mgmmolの薬物リン脂質比を用いて、実施例59に記載した通りにリポソームビンクリスチンを調製した。HER2特異的F5イムノリポソームビンクリスチンは、実施例19に記載した通りに抗HER2scFvF5PEGDSPE複合体と共にインキュベートすることによりリポソームビンクリスチンから調製した。遊離ビンクリスチン溶液は、硫酸ビンクリスチンUSPを水に溶解し、その後滅菌濾過して調製した。VCR、LsVCR、およびF5ILsVCRのHER2過剰発現ヒト乳癌細胞SKBr3に対する細胞毒性は、実施例27の手順を用いてMTTに基づく細胞生存度アッセイにより決定し、細胞を5000細胞ウェルで96ウェルマイクロタイタープレートに播種し、一晩順化させ、薬物含有培地と共に4時間インキュベートし、その後薬物を含まない培地中で3日間インキュベートした。結果を図40に示す。遊離VCRのIC50は75ngmlであり、F5ILsVCRのIC50は11ngmlであり、またLsVCRのIC50は3μgmlであった。本発明に従って調製した標的化リポソームビンクリスチンは、遊離薬物よりも活性が68倍高く、また非標的化リポソーム薬物よりも活性が273倍高く、細胞特異的薬物送達の機能としての抗癌活性の実質的な増加が示される。実施例62ラットにおけるLsVCRの血中薬物動態実施例11の方法により、ポアサイズ80nmまたは100nmを有する2枚重ねポリカーボネート膜を10回通過させる押し出し段階を用いて、SOSTEA溶液を捕捉し、DSPCCholPEGDSPEの脂質組成を有し、さらに15mCimmolリン脂質の3HCHEを含むリポソームを調製した。実施例59に記載した通りに、リポソームに、pH65、350mgmmolの薬物リン脂質比でVCRを充填した。VCR充填リポソームを雌アルビノラットに5mgVCRkgの用量で静脈内投与し、薬物およびリポソーム脂質の血中薬物動態を実施例9に記載した通りに試験した。血液試料中のVCRの量は、移動相中の酢酸トリエチルアンモニウム水溶液とアセトニトリルの容量比が65:35であること以外は実施例41に記載した通りに、HPLCにより定量化した。VCRの典型的な保持時間は88分であった。結果を図41および表34に示す。いずれの調製物も、非常に長い循環寿命を有した。リポソームビンクリスチンは、いずれの調製物においても薬物漏出に対して顕著に安定であった。表34TEASOS法を用いて350mgmmolリン脂質でビンクリスチンを充填したリポソームの特性実施例63ラットにおける様々な薬物脂質比のLsVCRの血中薬物動態実施例11の方法により、ポアサイズ50nmまたは80nmを有する2枚重ねポリカーボネート膜を10回通過させる押し出し段階を用いて、SOSTEA溶液を捕捉し、DSPCCholPEGDSPEの脂質組成を有し、さらに15mCimmolリン脂質の3HCHEを含むリポソームを調製した。実施例59に記載した通りに、20mgmL硫酸VCR保存水溶液を100、200、または350mgmmolリン脂質という算出された薬物脂質比で添加することにより、pH65でリポソームにVCRを充填した。薬物充填効率は、いずれの調製物においても96を上回った。VCR充填リポソームを雌アルビノラットに5mgVCRkgの用量で静脈内投与し、薬物およびリポソーム脂質の血中薬物動態を実施例62に記載した通りに試験した。結果を表35に示す。リポソームビンクリスチンは良好な循環寿命を有し、試験したすべての大きさおよび薬物脂質比において並外れて安定であった。表35TEASOS法を用いて様々な薬物脂質比でビンクリスチンを充填したリポソームの特性実施例64HER2標的化リポソームビンクリスチンの調製、ならびにマウスのHER2過剰発現ヒト乳癌異種移植片に対する非標的化およびHER2標的化リポソームビンクリスチンの抗腫瘍効果TEASOS法を用いたビンクリスチン充填リポソームは、実施例63に従って、50nmポアサイズ膜の押し出し、および100mgmmolの薬物脂質比での薬物充填を用いて調製した。F5イムノリポソームビンクリスチンは、実施例43に記載した通りに、LsVCRSOSを抗HER2scFvF5PEGDSPE複合体と共にインキュベートして形成した。TEAクエン酸を用いたビンクリスチン充填リポソームは、TEASOS溶液の代わりにクエン酸トリエチルアンモニウム溶液を使用すること以外はLsVCRSOSリポソームと同様に調製した。処置試験の設計は、実施例10の方法に従った。BT474ヒト乳癌の皮下異種移植片腫瘍をヌードマウスで生じさせ、腫瘍が250mm3の大きさに到達した時点で、8~9匹の群のマウスを、週に1度の2mgVCRkgという静脈内投与用量の遊離VCR、LsVCR、またはF5ILsVCRで、腫瘍接種後19日目から開始して全部で3週間の間処置した。腫瘍の大きさおよび動物体重を、実施例10に記載したようにモニターした。対照群では、マウスを等量の生理食塩水で処置した。処置群間の腫瘍の大きさの差を、マンホイットニー試験を用いて腫瘍接種後63日目の時点で統計的に評価した。群内の腫瘍の平均の大きさの動学を図43に示す。F5ILsVCRは、LsVCRまたは遊離VCRと比較した場合に最大の有効性を示し、63日目の時点で、動物8匹のうち6匹において完全な腫瘍退行をもたらした。LsVCRCitもまた有効であり、動物9匹のうち2匹において63日目になお認められる完全な腫瘍退行をもたらしたが、F5ILsVCRよりも効果は低かった。LsVCRSOSおよび遊離VCRは同等に有効であり、F5ILsVCRまたはLsVCRCitのどちらよりも効果は低かった。このように、驚くべきことに、細胞標的化送達では、本発明の多価アニオンを用いて封入したリポソーム薬物が、非結合性のアニオンを介してリポソーム内に封入した薬物よりも効果的であることが判明した。動物体重の動学から、リポソームVCR調製物はいずれも遊離VCRより毒性が低く、処置過程において体重減少を起こしにくいことが示された。実施例65EGFR標的化リポソームビンクリスチンの調製、ならびにマウスのEGFR過剰発現ヒト脳腫瘍異種移植片に対する非標的化およびEGFR標的化リポソームビンクリスチンの抗腫瘍効果ビンクリスチン充填リポソームは、実施例64のようにTEASOS法を用いて調製した。EGFR標的化イムノリポソームビンクリスチンは、実施例36に記載した通りに、リポソームを抗HER2FabC225FabPEGDSPE複合体と共にインキュベートして調製した。雄NCRnunuマウスの腹側部に、上皮増殖因子受容体変異体EGFRvIIIを安定して発現する1x107U87ヒト神経膠芽腫細胞を含む細胞増殖培地015mlを皮下注射した。腫瘍の平均の大きさが300~400mm3に到達した11日目に、マウスを動物10~12匹群の4つの群にランダムに分割した。腫瘍接種後11日、18日、および25日目に、15mgkg用量の遊離VCR、LsVCR、またはC225FabILsVCRの静脈内投与による処置を施した。対照群のマウスには、等量の生理食塩水を同様に注射した。腫瘍の大きさおよびマウスの体重を、実施例10のようにモニターした。結果を図45に示す。VCR製剤で処置した動物はすべて、対照動物と比較して腫瘍増殖の遅延を示した。遊離VCR処置群とLsVCR処置群の間に有意な差は見られなかった。EGFR標的化C225FabILsVCRは、遊離VCRまたは非標的化リポソームVCRよりも有効であった。実施例66イノシトール6リン酸トリエチルアンモニウム溶液を捕捉したリポソームの調製ポリアニオン化ポリオール、イノシトール6リン酸12ナトリウム塩は、Sigmaから入手した。実施例4の手順に従って、Dowex50Wx8200架橋スルホン酸化ポリスチレン樹脂でイオン交換し、その後ストレートなTEAで滴定し、水で希釈することにより、065Mトリエチルアンモニウムおよび0681Mリン酸基、pH65、ならびにモル浸透圧718mmolkgを有する水溶液を調製した。残存したナトリウム含量は、総カチオンの1未満であった。乾燥脂質を100エタノールUSP05mlに60°Cで溶解し、同じ温度に予熱したイノシトール6リン酸トリエチルアンモニウム溶液45mlと混合した。30~40mmHgおよび40~45°Cでの回転蒸発により、混合物が気泡発生を示さなくなるまで、エタノールを部分的に除去した。次いで、脂質懸濁液を、2枚重ね01μmポアサイズポリカーボネート膜を通して60~65°Cで15回押し出した。得られたリポソームは、QELSにより1043±390nmの大きさであった。封入されなかったIHPトリエチルアンモニウムを、Sepharose4Bカラムで5mMHEPESNa、5デキストロース、pH65緩衝液で溶出するゲルクロマトグラフィーにより除去し、リポソームを、実施例70に従って抽出を伴うBartlett法を用いてリン脂質濃度により定量化した。実施例67TEAIHP溶液を捕捉したリポソーム内への薬物の充填実施例67のリポソームに、CPT11またはビノレルビンを充填した。ビノレルビンは175または350gmolの薬物脂質比で充填し、CPT11は250または500gmolの比で充填した。薬物を、HEPESデキストロース緩衝液中のリポソームに、以下に示すインプット薬物リン脂質比で添加した。必要に応じて、1NNaOHを用いてpHを65~68に調整した。混合物を60°Cで30分間インキュベートし、氷上で15分間冷却し、SephadexG25ゲル濾過カラムでクロマトグラフにかけ、5mMHEPESNa、145mMNaCl、pH65で溶出した。精製されたリポソームの一定分量を酸性メタノール中で可溶化し、分光光度法により解析した。リン脂質は、抽出してBartlettの方法により定量化した。以下の表36に示すように、いずれの薬物もリポソーム内に定量的に充填された。表36イノシトール6リン酸を捕捉するリポソーム内に充填された薬物の特性実施例68インビトロにおけるマウス血漿存在下での遊離CPT11またはリポソームCPT11の化学安定性体内で、プロドラッグであるCPT11は化学転換を起こして、SN38として知られる活性薬物代謝産物を形成する。SN38およびCPT11はまた、それらの活性ラクトン型から、カルボン酸SN38またはCPT11として知られる不活性産物に変換される。本実施例では、本発明によるCPT11のリポソーム化が、血漿存在下におけるCPT11のこれらの産物への化学変換に及ぼす影響について検討した。スクロース8硫酸トリエチルアンモニウムを捕捉し、モル比320015のDSPC、コレステロール、およびPEGDSPEの脂質組成を有するリポソームを、実施例11に従って、2枚重ね008μmポリカーボネートフィルターを通す10回の押し出しにより調製した。リポソームは、QELSにより874±192nmの大きさであった。CPT11は、5mMHEPESNa、5デキストロース水溶液、pH65中で60°Cで30分間インキュベートし、氷上で15分間急冷することにより、CPT11塩基約500mgmmolリポソームリン脂質で充填した。次いで、CPT11充填リポソームを、SephadexG75カラムでHEPES緩衝生理食塩水で溶出して精製した。得られたCPT11リポソームは、5365±201mgCPT11mmolリン脂質を有した。遊離CPT11溶液は、144mMNaCl水溶液中に塩酸イリノテカンUSPを1mgmlで新たに溶解して調製し、希釈HClでpH3に酸性化した。遊離もしくはリポソームCPT11または遊離CPT11の10μl分割量を、ヘパリン安定化マウス血漿90μlと混合し、振盪水浴中で37°Cでインキュベートした。所与の時点で、三つ組のリポソーム試料を、SepharoseCL4Bサイズ排除カラムでクロマトグラフにかけ、HBS65で溶出し、薬物含有画分を蛍光により検出した。第1および第2薬物含量ピークを回収し、リポソーム封入薬物画分および放出薬物画分と見なした。試料は、氷冷メタノール400μlを用いて10秒間ボルテックスし、その後14100xgで5分間遠心分離して抽出した。WarnerandBurkeJChromatogrSerBBiomedSciAppl1997vol691p16171による方法を改良して使用し、上清をHPLCによりCPT11およびその変換産物について解析した。移動相は、14分間の20容量B~50容量Bの直線勾配で10ml分で送達される、3酢酸トリエチルアンモニウムpH55およびアセトニトリルからなった。溶出された産物は、375nmでの励起および500nmでの発光を用いて蛍光により検出した。保持時間は、53分、68分、93分、および110分であった。結果から、遊離CPT11およびリポソームから放出されたCPT11は変換を起こし、リポソーム内CPT11は極めて安定であることが示された。表37インビトロにおけるマウス血漿中での遊離CPT11およびリポソームCPT11のSN38およびカルボン酸型への変換実施例69ラットにおける遊離CPT11またはリポソームCPT11のインビボ化学安定性065MTEA、pH64、およびモル浸透圧502mmolkgを有するスクロース8硫酸トリエチルアンモニウムを用いて、実施例68のようにリポソームCPT11を調製した。リポソームの大きさは985±184nmであり、CPT11封入は5101±165mgCPT11mmolリン脂質であった。中心静脈カテーテルを留置した雌Albinoラットに25mgkg用量のリポソームCPT11および遊離CPT11を静脈内投与し、48時間にわたり間隔をおいて血液試料を採取した。血液試料を004EDTAを含む氷冷PBSと混合し、速やかに遠心分離して血液細胞を除去した。上清液の一定分量を、上記の実施例68のようにHPLCにより、CPT11、SN38、およびそれらのカルボン酸型についてアッセイした。結果を図46および図47に示す。遊離CPT11は非常に迅速に排除され、30分後には検出できないのに対し、リポソームCPT11は循環中に存在し続け、24時間の時点で薬物の378が血中に存在し、また48時間後には薬物の約10が循環中になお存在した。リポソーム型のCPT11では、SN38またはカルボン酸型CPT11のいずれへの変換も検出されなかった。遊離CPT11、すなわち溶液として投与されたCPT11は、循環から非常に速やかに排除され、カルボン酸型薬物へのかなりの変換が認められた。実施例70リポソームリン脂質の定量化酸消化青色リンモリブデン酸改良法I本方法はBartlettの改良法である。リポソームの10~20ml分割量を耐熱性ガラスチューブに入れ、10N硫酸05mlと共に110~130°Cで2時間加熱して消化し、9過酸化水素50mlを添加して鉱化し、過酸化水素が指示薬紙片により検出されなくなるまでさらに30分間加熱する。外界温度の消化試料を02モリブデン酸アンモニウム水溶液1mlで希釈し、5アスコルビン酸水溶液01mlと混合し、沸騰水浴において10分間インキュベートする。還元されたリンモリブデン酸錯体の吸光度を800nmで測定し、無機リン酸標準物質溶液を用いて同時に作成した検量線と比較する。酸消化青色リンモリブデン酸改良法II本方法は、Morrisonによる方法の改良法である。1~10mMリン脂質を有するリポソームの5μl分割量を、耐熱性ガラスチューブ中で、濃硫酸60μlおよび30過酸化水素10μlと混合する。混合物を200~220°Cで10分間加熱し、脱イオン水07μlで希釈し、10亜硫酸ナトリウム水溶液10μlと混合し、沸騰水浴において5分間インキュベートし、外界温度になるまで冷却する。2モリブデン酸アンモニウム水溶液200μlおよび10アスコルビン酸水溶液10μlを添加し、試料を沸騰水浴において10分間インキュベートする。試料を外界温度まで急冷し、還元されたリンモリブデン酸錯体の吸光度を、空試料に対して825nmで測定する。2、4、6、8、および10mMリン酸二水素カリウムを含む標準物質溶液を用いて同時に行って得られた検量線から、リン脂質の量を決定する。抽出法リポソームの25~100μl分割量を、メタノールクロロホルム混合物の200μl部分量で3回抽出する。有機相を耐熱ガラスチューブ中で混合し、真空中で溶媒を除去する。残渣を10N硫酸で処理し、上記の方法Iに従ってリンについてさらにアッセイする。特記しない限り、解析データは、三つ組で実施した平均値±標準偏差として表す。実施例71リポソーム内の薬物の定量化分光光度法による定量化リポソームの一定分量を、0075~01NHClを含む70容量イソプロパノール水溶液1mLと混合し、空試料に対する吸光度を以下の波長で測定する:ドキソルビシン、485nm;CPT11およびトポテカン、372nm;エリプチシン類、306nm、ビノレルビン、270nm;ビンクリスチンおよびビンブラスチン、265nm。同時に実施した検量線と比較して、薬物の量を決定する。蛍光分析による定量化リポソーム含有試料の一定分量を、酸性イソプロパノールで希釈する。タンパク質の沈殿が生じた場合には、試料を氷上で1~2時間インキュベートし、12100xgで10分間遠心分離して清澄化する。上清の蛍光を以下の波長で測定する:CPT11、励起370nm、発光423~425nm;トポテカン、励起380~385nm、発光520~525nm;エリプチシン類、励起306nm、発光520nm。薬物の量は、空蛍光を減じた後に、同時に実行した検量線から計算する。実施例72リポソーム内へのビノレルビンの充填効率に及ぼすリポポリマーの影響実施例11の方法に従い、押し出し段階に80nmポアサイズ膜を使用して、DSPC200モルの割合、コレステロール133モルの割合、およびポリ誘導体化脂質PEGDSPEまたはPEGDSGから構成され、封入された065MTEASOS溶液を含むリポソームを調製した。リポソームに350mgmmolの薬物リン脂質比でビノレルビンを充填し、実施例40の方法に従って封入されなかった薬物から精製した。リポソームを、実施例70、71に記載したように薬物および脂質含量について、ならびに体積加重ガウス近似を用いてQELSによりリポソームの大きさについてアッセイした。結果から、リポソームリン脂質の1モルを超える量のアニオン性PEG誘導体、PEGDSPEは、薬物充填効率に悪影響を及ぼすのに対し、中性誘導体、PEGDSGは驚くべきことに、リポソームリン脂質の91モルでさえも充填効率に影響しないことが示された。表38様々な量のPEG脂質誘導体でTEASOS法により調製したビノレルビンリポソームの特性実施例73マウスにおけるCPT11の血中寿命に及ぼすリポソーム内薬物捕捉剤の影響実施例66の基本手順に従って、イノシトール6リン酸またはスクロース8硫酸のトリエチルアンモニウム塩またはトリエタノールアンモニウム塩の065N溶液を捕捉したリポソームを調製し、500gmolリン脂質のCPT11を充填した。リポソームを5mgCPT11kg体重の用量で、SwissWebsterマウスに静脈内投与した。24時間後、マウスに麻酔をかけ、心臓切開穿刺によりマウスを放血させた。血液を回収し、実施例68に記載した通りにHPLCによって血漿中のCPT11含量について解析し、血中に残存している、注射用量のとして薬物量を表した。TEOAIHPは、TEAIHP、TEOASOAS、およびTEASOSよりも血中寿命の改善において効果が低かった。表39マウスにおけるCPT11リポソームの静脈内投与24時間後の血中CPT11残存実施例74105Nスクロース8硫酸ジエチルアンモニウムを含むリポソーム内への薬物充填ストレートなジエチルアミンを用いて、実施例6のイオン交換滴定法により、105Nスクロース8硫酸ジエチルアンモニウムpH60、浸透圧727mmolkgの水溶液を調製した。DEASOS溶液の存在下で、3モルの割合のDSPC、2モルの割合のコレステロール、および0015モルの割合のPEG2000DSPEの脂質マトリックスを製剤化してリポソームを形成し、実施例11の方法を用いて様々な薬物脂質インプット比でCPT11をリポソーム内に充填した。封入されなかった薬物をゲルクロマトグラフィーによって除去し、単位脂質当たりの封入薬物の量を決定した。インプット比に対する薬物脂質アウトプット比のとして、封入効率を計算した。結果を表40に示す。充填は、約176mol薬物モルリン脂質の最大レベルを達成し、リポソーム内ジエチルアンモニウムイオンと薬物分子の化学量論的交換、および推定リポソーム内捕捉容量約17lmolリン脂質を仮定すると、これはリポソームのジエチルアンモニウム含量に基づく量と十分に一致する。表40105NDEASOSを含むDSPCCholPEGDSPEリポソームにおけるCPT11の充填特記しない限り、解析データは、三つ組で実施した平均値±標準偏差として表す。ラット血漿薬物動態データは、二つ組で実施した平均値±標準偏差である。本発明を現時点で好ましい態様に関して記載したが、本発明の精神から逸脱することなく、様々な変更がなされ得ることが理解されるべきである。したがって、本発明の範囲は、添付の特許請求の範囲が権利を有する等価物の完全な範囲とともに、このような特許請求の範囲に関して決定されるべきである。特許出願および出版物をはじめとする、引用したすべての論文および参考文献の開示は、すべての目的のために参照として本明細書に組み入れられる。