第1分子と、粒子と結合する第2分子との間での相互作用を解析する方法であって:前記相互作用を可能にする条件下で前記第1分子と前記粒子に結合する前記第2分子とを接触させる手順;前記第2分子に結合する前記粒子へ所定の液体流を与える手順;前記液体流により生じる前記第2分子に結合する前記粒子の運動を観察する手順;前記液体流と前記運動による前記相互作用を解析する手順;を有し、前記粒子は、前記第1分子及び又は前記第2分子よりも大きな流体力学的抵抗、1よりも大きな質量ペクレ数、並びに、1乃至100nmナノメートルサイズの寸法を有する、方法。前記粒子の運動が、前記粒子の物理的特性及び又は化学的特性によって観察される、請求項1に記載の方法。前記観察する手順は、光学的方法、化学的方法、電気化学的方法、及び磁気的方法からなる群から選ばれる方法によって実行される、請求項1又は2に記載の方法。前記観察する手順は、蛍光放出体の利用、励起手段の利用、及び、蛍光検出手段の利用からなる群から選ばれる方法によって実行される、請求項3に記載の方法。前記蛍光放出体は、前記粒子自体、又は、前記粒子及び若しくは前記第1分子と前記第2分子からなる群から選ばれる少なくとも1つの分子に係るラベルである、請求項4に記載の方法。前記所定の液体流が、6πμRvに等しい力Fを前記粒子に加えることを可能にし、ここで、μは前記流体の粘度を表し、Rは前記粒子の流体力学的半径を表し、vは前記粒子の位置での前記流体の速度を表す、請求項1乃至5のうちのいずれか一項に記載の方法。前記解析する手順が定量的又は定性的である、請求項1乃至6のうちのいずれか一項に記載の方法。前記相互作用が、生物分子同士の相互作用又は生物分子と化学分子との間での相互作用である、請求項1乃至7のうちのいずれか一項に記載の方法。前記第1分子が細胞膜の分子である、請求項1乃至8のうちのいずれか一項に記載の方法。第1分子と少なくとも1つの第2分子との間での相互作用を解析する装置であって:所定の液体流を与える手段;第1分子及び該第1分子と相互作用しうる第2分子と結合しうる1乃至100nmナノメートルサイズの寸法を有する粒子を受ける支持体;前記粒子の運動を観察する手段;を有し、前記粒子は、前記第1分子及び又は前記第2分子よりも大きな流体力学的抵抗、及び、1よりも大きな質量ペクレ数を有する、装置。前記所定の液体流を与える手段が、前記所定の液体流を介して6πμRvに等しい力Fを前記粒子に加えることを可能にする手段で、ここで、μは前記流体の粘度を表し、Rは前記粒子の流体力学的半径を表し、vは前記粒子の位置での前記流体の速度を表す、請求項10に記載の装置。前記粒子の運動を観察する手段が、前記粒子の物理的特性及び又は化学的特性を利用した観察手段である、請求項10又は11に記載の装置。医薬開発の候補となる分子のスクリーニングでの請求項1乃至9のうちのいずれか一項に記載の方法又は請求項10乃至12のうちのいずれか一項に記載の装置の使用。従って従来技術のこれらの欠点、課題、及び障害を克服する分子間相互作用を解析する装置及び方法が現実に必要とされている。具体的には、より単純で、より実用的で、より安価で、複数の相互作用の一度に調査するのに適していて、分子スケールでの分子間相互作用の解析を十分厳密に行うことのできる装置が必要とされている。従って特に、1対の分子レベルでの分子間相互作用を解析する装置及び方法が必要とされている。よって本発明の第1態様は、少なくとも1つの第1分子と少なくとも1つの第2分子との間での相互作用を解析する方法に関する。当該方法は:-前記相互作用を可能にする条件下で前記第1分子と前記粒子に結合する前記第2分子とを接触させる手順;-前記第2分子に結合する前記粒子へ所定の液体流を与える手順;-前記液体流により生じる前記第2分子に結合する前記粒子の運動を観察する手順;-前記液体流と前記運動による前記相互作用を解析する手順を有する。前記粒子は、前記第1分子及び又は前記第2分子よりも大きな流体力学的抵抗、及び、1よりも大きな質量ペクレ数を有する。本発明の第2態様は第1分子と少なくとも1つの第2分子との間での相互作用を解析する装置に関する。当該装置は:-所定の液体流を与える手段;-第1分子及び該第1分子と相互作用しうる第2分子と結合する粒子を受ける支持体;-前記粒子の運動を観察する手段を有する。前記粒子は、前記第1分子及び又は前記第2分子よりも大きな流体力学的抵抗、及び、1よりも大きな質量ペクレ数を有する。本明細書において、分子とは、少なくとも1つの分子つまり1つ以上の分子を意味する。分子が複数の分子であるときには、その複数の分子は同一であっても良いし、又はそれぞれ異なっていても良い。第1分子と第2分子は同一であっても良いし、又はそれぞれ異なっていても良い。これはまた、2種類以上の形態で存在する第1分子-たとえばM1とM1-又は2種類以上の形態で存在する第2分子-たとえばM2とM2-をも含んで良い。この厳密な場合では、同一実験の間での、第2分子M2と対比される1つの第2分子M2に関する1つの第1分子M1の親和性の検出と比較、又は、同一実験の間での、第1分子M1と対比される1つの第1分子M1関する1つの第2分子M2の親和性の検出と比較が問題となる。分子は有機分子であっても良いし、又は無機分子であっても良い。分子が有機分子であるとき、その分子は、合成分子であっても良いし、又は生物の分子であっても良い。2種類以上の形態-たとえばMとM-で存在する場合、分子はたとえば、同一のタンパク質の2種類以上の異なる配列であっても良いし、又は、2種類以上の異なるDNAヘリックスであっても良い。換言すると、本発明は、任意の種類の分子相互作用の解析に対して有利となるように用いられ得るので、任意の種類の相互作用する分子の解析に対して有利となるように用いられ得る。分子相互作用は、有機有機、有機無機、又は無機無機の分子相互作用であって良い。本発明では、分子相互作用は、共有結合ではない可逆性の結合を意味すると解される。分子相互作用は選択的であっても良いし、又は、非選択的であっても良い。選択的相互作用の場合、分子相互作用はたとえば、抗原-抗体、リガンド-受容体、又は酵素-基板の相互作用であって良い。ただしこれらの限定される訳ではない。非選択的相互作用の場合、分子相互作用は生物分子と表面との相互作用であって良い。第1分子及び又は第2分子が有機分子であるとき、その第1分子及び又は第2分子は、アミノ酸、ペプチド、タンパク質、ヌクレオシド、ヌクレオチド、核酸、脂肪酸、単純若しくは複雑脂質、糖、単糖類、多糖類、リン脂質、糖脂質、糖タンパク質、リポタンパク質、グリコリポタンパク質、又は他の分子と相互作用することの可能な他の生物の分子を含む群から選ばれて良い。分子が核酸分子であるとき、その分子はDNAデボキシ核酸又はRNAリボ核酸であって良い。分子がペプチド又はタンパク質分子であるとき、その分子は、候補となる医薬、細胞膜の分子、毒素、抗体、皮膚の母体成分-たとえばコラーゲン又はフィブロネクチン-又は受容体-具体的には膜受容体-を含む群から選ばれる分子であって良い。分子は、多分子系-たとえばリボゾーム、プロテオゾーム、アポトソーム、セントロソーム、細胞内区画-たとえばミトコンドリア、エンドソーム、リソソーム、ファソソーム、ベシクル-、又は、1つの細胞、単細胞有機体-たとえばバクテリア、イースト、菌類、単細胞藻類、原生動物-であっても良い。分子はまた多細胞系-たとえば細胞培養、表皮、細胞分裂、又はバクテリアコロニー-であっても良い。分子が無機分子であるとき、その分子は、当業者に知られた任意の無機分子、又は、無機表面-たとえばポリマー表面、金属表面、フッ素化表面、又はシリコン表面-であって良い。例として、第1分子は細胞膜受容体で、かつ、第2分子は、前記受容体のリガンド又は前記受容体と結合可能な分子であって良い。第1分子又は第2分子は有利となるように、300~300000gmolの範囲の分子量を有して良い。有利となるように第1分子又は第2分子は、100~4000gmolの範囲の分子量を有して良い。第1分子は、受容支持体と結合して良いし、又は、その受容支持体の分子であっても良い。受容支持体は、第1分子を受容可能にする任意の表面であって良い。好適には、この表面は、分子の配列を保存しながら、第1分子がその表面に付着することを可能にする。この理由はたとえば、タンパク質が第2分子と相互作用するとき、そのタンパク質と第2分子との相互作用領域にとっては、そのタンパク質が表面に付着することでその第2分子が変性しないことが重要だからである。有利となるように第1分子は、本発明の方法の実施中、所定の液体流によって支持体から脱離しないように、十分強く支持体に結合する。第1分子の付着は直接的であっても良いし、又は間接的であっても良い。第1分子が表面と直接的に相互作用するとき、その付着は直接的である。その理由は、表面が、事前に官能化されるか、又は、その第1分子の付着を可能にする本質的な化学特性を有しているからである。スペーサアーム又は多分子構造-たとえば細胞壁の断片-が表面に付着しているとき、第1分子の付着は間接的である。有利となるように、支持体は、第1分子が上に結合する1つ以上の結合領域を有して良い。支持体が1つの結合領域を有するとき、1種類以上の第1分子が、その領域に結合して良い。支持体が複数の結合領域を有するとき、各領域は1種類以上の第1分子を有して良い。有利となるように第1分子は一の領域と他の領域とで異なって良い。複数の結合領域は、表面上の制御された位置に様々な分子を堆積することを可能にするマイクロディスペンサスポッタとも呼ばれるを用いて生成されて良い非特許文献11を参照のこと。有利となるように、支持体は、たとえば様々な種類の粒子、並びに又は、様々な種類の第1分子、並びに又は、様々な種類の第2分子、並びに又は、様々な種類の互いにわずかに異なる第1分子及び若しくは互いにわずかに異なる第2分子によって、同時又は順次に解析を行う複数の方法を実行することを可能にする。支持体は、DNAチップ又はタンパク質チップにおいて用いられる種類の支持体であって良い。しかしこれらに限定されるわけではない。上記の支持体はたとえば、Affmetrixによって販売される支持体であって良い。これらの特性を得ることを可能にする当業者に知られた任意の材料が用いられて良い。そのような材料とはたとえば、ガラス、シリコン、プラスチック-たとえばポリスチレン、ポリジメチルシロキサン、又はポリメタクリラート-であって良いが、これらに限定される訳ではない。支持体は、当業者に知られた任意の方法に従って製造されて良い。支持体はたとえば、VWRによって販売されているガラス支持体であって良い。支持体は透明な表面であって良いし、又は不透明な表面であっても良い。本発明では、粒子は、有機又は無機の対象物を構成する原子の集まりを意味すると解される。粒子は、第2分子へ力を印加することを可能にする。有利となるように粒子は、観察すなわち視覚化されうる。それにより、第2分子の位置又は運動を同時に観察すなわち視覚化することが可能となる。本発明では、流体力学的抵抗とは、所定の液体流が流れることによって生じるすべての応力から生じる粒子への力を意味すると解される。粒子の寸法は、その粒子が、第1分子及び又は第2分子よりも大きな流体力学的抵抗を有するようなものである。有利となるように粒子の流体力学的抵抗によって、制御された液体流によって、その粒子の運動及び第2分子の運動が引き起こされうる。本発明では、質量ペクレ数は、質量の固有拡散時間と前記質量の対流時間との比を意味すると解される。これはvLDに等しい。ここで、vは流れの固有速度で、Lは粒子の固有サイズで、Dは粒子の拡散係数である。粒子のペクレ数は1よりもはるかに大きい。ペクレ数はたとえば1~10000であって良い。これらの固有質量ペクレ数は、その粒子が、所定の流れによる同調化の効果と比較して無視できるブラウン運動に起因する運動に対して十分なサイズを有することを示唆している。粒子はマイクロ粒子であって良い。つまり粒子は、ミクロンサイズの寸法を少なくとも1つ有して良い。たとえばマイクロ粒子は、1~100μm、10~80μm、20~70μm、又は30~50μmのサイズを有する。有利となるように粒子はナノ粒子であって良い。つまり粒子は、ナノメートルサイズの寸法を少なくとも1つ有して良い。たとえばナノ粒子は、1~500nm、1~200nm、1~100nm、10~80nm、20~70nm、又は30~50nmのサイズを有する。粒子は当業者に知られた任意の粒子であって良い。そのような粒子とはたとえば、ガラス、ラテックス、ポリスチレン、又は、金属粒子-たとえば金、銀、銅-及び磁性材料から作られる粒子であって良いが、これらに限定される訳ではない。粒子はまた、天然若しくは合成の生物のナノ粒子又はマイクロ粒子であって良い。そのような粒子とはたとえば、金属、半導体、金属酸化物、ポリマー、又はナノ球であって良いが、これらに限定される訳ではない。ナノ粒子を利用する人たちの間では、細胞膜分子に付着した粒子を取り囲む水性培地は、その粒子の運動に影響を及ぼさないことが一般的に認められている。制御された流体の運動が存在しない状態では、ナノ粒子の運動は、周囲の流体によっては制御されず、その粒子が付着する対象物の挙動によって制御されることが示されてきた。この理由は、膜分子膜脂質又は膜タンパク質のサイズと比較してナノ粒子のサイズは大きいとはいえ、膜の粘性が水の粘性よりもはるかに大きいので、全体の運動は、膜分子の運動によって決定されるからである。しかも、ナノ粒子に加わる流体力学的な力を予測することは容易ではない。また、速度が壁でゼロとなり、かつ、ナノ粒子と付着したその系は、他すべての流れのスケールでは概して非常に小さいと仮定した、ポアズイユの法則とストークスの定理に基づく大きさの桁の簡単な計算によると、力は、第1分子と第2分子との間での相互作用又は第1分子の挙動に重大な影響を及ぼすには小さ過ぎることを示している。これらの事実が示唆することとは対照的に、たとえば流れの中のナノ粒子によって、細胞膜内部で膜分子を運動させるのに十分大きな力を加えることは可能である。特にチャネルの表面近傍では、ストークスの定理はもはや有効ではなく、加えられる流体力学的な力は、ストークスの定理によって予測されるものよりもはるかに大きくなる非特許文献12~15を参照のこと。粒子の次元のうちの少なくとも1つのサイズは、第2分子のサイズよりも大きくて良い。粒子は、第2分子のサイズの5~100倍-たとえば10~20倍-の次元を少なくとも1つ有して良い。粒子は、所定の液体流によって同調されるのに適した形状を有して良い。粒子は実質的に球形状-たとえば実質的に円形又は楕円形-を有して良い。粒子はこの場合ビーズであって良い。あるいはその代わりに粒子は、非球体-たとえば卵形、円筒形、又は円盤形状-であっても良い。粒子はたとえば、半導体量子ドットについてはInvitrogenから市販されている適切な分子であって良く、又は、金のナノ粒子についてはBritishBiocellInternationalから市販されている適切な分子であって良い。あるいは粒子は、当業者に知られた手段-たとえば希土類がドープされたナノ粒子については非特許文献16に記載された方法-に従って作製されても良い。好適には粒子と第2分子との結合は、所定の液体流によって破壊されない程度に十分安定である。粒子と第2分子は、当業者に知られた任意の手段によって結合されて良い。当業者に知られた任意の手段とはたとえば、弱い化学結合-たとえば静電力、ファンデルワールス力-、水素結合、疎水結合-、強い化学結合-たとえばイオン結合、共有結合、金属結合-、又は、結合剤-たとえば一方で粒子の表面に存在する官能基たとえばアミン官能又はカルボキシル酸官能へ付着し、他方で第2分子たとえばアミン官能又はスルフヒドリル官能へ付着することを可能にする2つの官能を備える結合剤-であって良い。そのような結合剤は、たとえばPierceから市販されている。粒子の第2分子はまた、たとえば強い親和性有する生物学的相互作用-たとえばビオチン-ストレプトアビジン相互作用又はリガンド-受容体相互作用若しくは抗体-抗原相互作用及び多段結合-つまり最初にストレプトアビジン又はビオチンを粒子と結合させ、ビオチン又はストレプトアビジンを第2分子と結合させ、続いて2つの結合物同士を相互作用させる-を用いることによって結合されても良い。第1分子と第2分子は、本発明の解析装置内で接触した状態にされて良い。本発明の装置はこの点について、第1分子と第2分子とを接触した状態にする手段を有して良い。前記手段は、第1分子と第2分子とを接触した状態にするのに適した構造を備えるチャネルであって良い。チャネルの構造はたとえば、直線、T字、若しくはY字、又は、独立に反応物を追加することを可能にするより複雑な構造であっても良い。構造は、導入される反応物の数又は導入される各異なる第1分子及び若しくは第2分子の数に依存して、当業者によってすぐに決定されうる。有利となるように、当該装置は、第1分子、粒子と結合する第2分子、及び所定の液体流を導入できるように、少なくとも1つの流入部を有して良い。当該装置はまた、該装置へ注入される各異なる多数の第1分子及び若しくは第2分子が必要とする数の流入口、又は、同時若しくは順次実行される多数解析が必要とする数の流入口を有して良い。たとえば装置は2つの流入口を有しても良い。前記2つの流入口の一は第2分子と結合する粒子を注入するためで、前記2つの流入口の他は液体流を与えるためである。2つの別個の流入口が存在することで、第2分子と結合する粒子を含まない流れを得ることが可能となる。よって2つの別個の流入口が存在することで、1つの流入口を備える装置と比較して、信号バックグラウンド雑音の比を増大させることが可能となる。有利となるように装置はまた流出口をも有して良い。流出口は容器と接続されて良い。容器は、装置へ気泡を導入する危険性なく流れの方向を修正することを可能にする。容器は、流れの方向を変化させる手順を含む実施例においてしか有利となるように必要とされない。チャネルの寸法は、第1分子、第2分子、及び又は粒子の性質並びにサイズに従って選ばれて良い。たとえばチャネルは高さを有して良い。高さとは、第1分子の受容支持体とチャネルの上壁との間の距離である。この距離は、第1分子の相互作用と第2分子の相互作用を研究することが可能な程度に十分大きい。従って高さは、第1分子及び又は第2分子の寸法に依存しうる。たとえば第1分子が細胞であるとき、チャネルの高さが不十分であることで、その細胞は閉じこめられ、その細胞の生理学的特性に望ましくない影響が生じる恐れがある。チャネルの高さは、使用される流れを制御する手段の機能として、粒子のレベルでの所望の流体速度範囲で制限される。具体的にはチャネルの高さが高いほど、速度は低下する。例としてチャネルは20~70μm-たとえば30μm、40μm、50μm、又は60μm-の高さを有して良い。たとえば第1分子が細胞である場合、チャネルの高さは約50μmであって良い。チャネルの幅は、所望量の第1分子の観察を可能にするのに十分大きくなければならない。有利となるように高さ幅の比は、層流に相当する所定の液体流の生成を化膿にする程度に十分小さくなければならない。比はたとえば100~12であって良い。チャネルは100μm~2mm-たとえば約500μm-の幅を有して良い。チャネルは、所定の液体流が流入口及び又は流出口へ向かうときに中断しないように十分長くなければならない。有利となるようにその長さは、チャネルの十分長い領域全体にわたってそのチャネルの壁に対して平行な流体力学的な流れのラインのプロファイルを供するのに十分なものでなければならない。チャネルは1mm~10cm-たとえば約15cm-の長さを有して良い。長さは、相互作用の解析を可能にするように十分多数の第1分子を結合することを可能にする。チャネルの長さは、そのチャネルが光学デバイス-たとえば光学板-上に存在する場合に限定されても良い。第1分子と第2分子とを接触した状態にする条件は、その第1分子と第2分子に従って当業者によって容易に決定することができる。本発明では、液体流は、任意の液体の流れを意味すると解される。有利となるように流れによって、粒子に力を及ぼすことが可能となる。流れはまた粒子を同調化させることをも可能にする。流れは、一方向であっても良いし、又は、複数の方向-たとえば互い違いの方向-を有しても良い。有利となるように流れは層流であって良い。流れは、溶液-たとえば水溶液、リン酸緩衝液若しくはHEPES緩衝液によりpHが一定に保たれた食塩水溶液、細胞培養培地、又は、良好な条件下で第1分子及び若しくは第2分子を研究するのに必要な任意の他の溶液-又は分散物の液体流であって良い。有利となるように所定の液体流は、流れの中で浮いていて、その流れによって移動する対象物を含んで良い。有利となるように、これらの対象物の速度を測定することで、粒子の周囲での流体の速度を測定することが可能となる。この測定は、第1分子と第2分子との間での相互作用の解析手順とは別個の手順において実行されて良い。本発明では、所定の流れとは、粒子に加わる力を制御することが可能となるような特性を有する任意の流れを意味すると解される。換言すると、所定の流れは、粒子に加わる力の大きさと方向を選ぶことを可能にするような特性を有する流れであって良い。有利となるように所定の流れは、粒子の運動を引き起こす前記粒子へ力を加えることを可能にする。力は、支持体からの第1分離の脱離もその支持体への損傷も引き起こさない。流れの特性は、液体の流速、液体の粘性、及び液体に加えられる圧力を含む群から選ばれる少なくとも1つのパラメータを制御することによって決定されて良い。液体の粘性は、当業者に既知の任意の方法によって決定されて良い。既知の方法とはたとえば、毛細管の2つの端部での圧力差によって発生する流速を測定する毛管粘度計の利用ポアズイユの法則又はクエット板CouettePlate粘度計の利用非特許文献17を参照のことである。所定の液体流の速度は連続的であって良い。つまり所定の液体流の速度は一定値を有して良い。あるいはその代わりに所定の液体流の速度は不連続であって良い。つまり所定の液体流の速度は複数の値を有して良い。この場合、速度は線形的に増大又は減少して良い。あるいはその代わりに速度はステップ状に増大又は減少しても良い。このステップ間の周期は、当業者が収集したい情報に依存して、その当業者によって容易に決定されうる。所定の液体流の速度は、当業者に既知の任意の方法によって測定されて良い。所定の液体流の速度は、当業者に既知の任意の方法-たとえばポアズイユの法則に従った壁からの距離の関数としての速度の計算-によって各場面で容易に決定されうる。液体流が電気浸透流である場合、速度は、チャネル内で一定であり、かつ、印加された電場とそのチャネルの構造に依存する非特許文献18を参照のこと。粒子の位置での所定の液体流の速度は、粒子の上流及び又は下流の速度から計算されうる。この場合では、粒子は、流れをわずかに変化させるだけで、他の特性や流速の測定には影響を及ぼさない。この計算法はまた、複数の実験同士の定量的な比較をも可能にする。あるいはその代わりに速度は、第1分子とも第2分子とも相互作用せず、流れによって輸送される未結合の浮遊マーカーを視覚化することによって測定されうる。様々な-たとえば様々なサイズの-浮遊マーカーが流れに注入されて良い。たとえばこの目的のために蛍光ビーズが用いられて良い。所定の液体流は、6πμRvに等しい力Fを粒子に加えることを可能にする。ここで、μは流体の粘度を表し、Rは粒子の流体力学的半径を表し、vは粒子の位置での流体の速度を表し、力Fは6πμRvに等しく、かつ、壁近傍の効果が補正されても良い。流体の速度は、粒子の上流又は下流の、粒子に対して大きいが他の流れの変化に対しては小さい距離で測定されて良い。数10nmの球状の粒子の場合では、その半径は流体力学的半径と非常に近くなる。非常に小さなサイズの粒子又は非球状粒子の場合では、その流体力学的半径は、たとえば動的光散乱によって決定されうる。動的光散乱による粒子又は分子の流体力学的半径の測定装置はとりわけ、Malvern社から市販されている。粒子が流体力学的半径に匹敵するチャネル壁からの距離に位置するとき、具体的にはその粒子から壁までの距離、その粒子の幾何学形状、及び流れの特性粘度と速度に関連付けられる補正因子が、たとえば非特許文献12乃至15に記載された手法に従って、上の式に適用されて良い。所定の液体流が与えられて良い。その所定の液体流のパラメータは、当業者に知られた手段-たとえば流れを制御するマイクロ流体において用いられる任意の装置-によって制御されて良い。流れはたとえば、シリンジドライバ上に設けられたシリンジ、又は、ペリスタルティックポンプを介して与えられても良い。本発明では、運動とは、第1分子と第2分子とが相互作用する瞬間に関する粒子の空間的位置の変化を意味すると解される。有利となるように、粒子の位置は、第1分子と第2分子とが相互作用する瞬間、及び、任意で所定の液体流が与えられ始める瞬間に測定される。有利となるように、粒子の位置は、所定の液体流が与えられる前後に規則的な間隔で測定されて良い。有利となるように、粒子の運動は、第2分子の運動に伴って引き起こされうる。有利となるように、粒子の運動は、第1分子と第2分子との間での相互作用を破りうる。粒子の運動又は位置は、その粒子の物理的特性及び又は化学的特性を利用して観察されうる。粒子の観察可能な物理的特性は、光の吸収、反射、若しくは散乱、蛍光、又は、磁気若しくは電気特性であって良い。粒子の化学的特性はたとえば、基板との反応を引き起こして良い。その結果、蛍光又は吸収生成物が生成される。これは、化学発光又は生物発光を含んで良い。与えられた流れによって引き越される第2分子に結合する第1分子の運動は、当業者に知られた任意の手段によって観察されて良い。そのような当業者に知られた任意の手段とはたとえば、光学的方法、化学的方法、電気化学的方法、及び磁気的方法からなる群から得られ張る手法であって良い非特許文献19乃至21を参照のこと。光学的方法はたとえば、蛍光信号を測定する方法、表面プラズモン共鳴による解析方法非特許文献22を参照のこと、光ピンセットの利用を含む方法非特許文献23を参照のこと、レーザーの利用を含む方法からなる群から選ばれた方法であって良い。ただしこれらに限定される訳ではない。光学的方法が表面プラズモン共鳴による解析方法であるとき、支持体は透明であって良い。有利となるように、光学的方法は、吸収の検出非特許文献24乃至27を参照のこと、反射、散乱非特許文献28を参照のこと、回折、屈折率変化非特許文献29乃至31を参照のこと、蛍光放出体の利用、励起手段の利用、及び、蛍光検出手段の利用非特許文献32を参照のことからなる群から選ばれた方法であって良い。換言すると、観察は、蛍光放出体の利用、蛍光検出手段の利用、吸収検出手段の利用、反射検出手段の利用、散乱検出手段の利用、及び、回折検出手段の利用からなる群から選ばれる方法であって良い。粒子の運動が蛍光方法によって検出される場合、蛍光放出体は、粒子自体であって良いし、又は、その粒子及び若しくは第1分子と第2分子からなる群から選ばれる少なくとも1つの分子に係るラベルであっても良い。好適には蛍光放出体は、粒子自体であって良いし、又は、その粒子及び若しくは第2分子に係るラベルであっても良い。蛍光は1つ以上の蛍光波長によって表されて良い。有利となるように蛍光放出体は、光エネルギーを吸収し、かつ、そのエネルギーをすぐに解放する特性を有する当業者に知られた任意の種類の分子であって良い。この放出体は有機の蛍光体であって良いし、又は、無機粒子であっても良い。そのような放出体はたとえば、量子ドット、ランタン系イオンがドープされたナノ粒子、ナノダイヤモンド、有機蛍光体-たとえばローダミン、FITCフルオレセイン、シアニン、Alexa登録商標、ドーパミン、又はクロモマイシンA-、蛍光タンパク質たとえばGFP、YGF、DsRed、及び、有機蛍光体を含む無機粒子から選ばれる放出体であって良い。蛍光放出体が粒子それ自体ではないとき、その粒子のラベル付け又は蛍光放出体を備える第2分子のラベル付けは、当業者に知られた任意の手段によって実行されて良い。これはたとえば、非特許文献33、非特許文献34、特許文献3、及び非特許文献35に記載されたラベル付け方法であって良い。有利となるように蛍光は、高い信号対雑音比を得ることを可能にする。粒子の位置はたとえば、Zeiss、オリンパス、又はニコンから市販されている広視野顕微鏡による可視化によって視覚化されて良い。前記手段には、たとえばPrincetonInstruments、Andor、又は浜松フォトニクスから市販されているCCDカメラ、EMCCDカメラ、又はCMOSカメラが備えられて良い。位置は、軸解像度を有する方法-たとえば2光子励起若しくは非線形励起非特許文献36を参照のこと又は内部全反射非特許文献3738を参照のこと-によって視覚化されて良い。観察される運動及び加えられる流れに従った相互作用の解析は、当業者に知られた任意の手段によって実行されて良い。相互作用の解析は定量的であっても良いし又は定性的であっても良い。その解析はたとえば、第1分子と第2分子との間での親和性を測定することを可能にする。その解析はたとえば、第1分子及び第2分子の会合定数並びに又は解離定数の測定を可能にする。たとえば力Fが加えられた状態で第1分子と第2分子との間での解離定数koffの測定は、多くの分子の組-たとえば30-で脱離時間を測定することによって定量的に測定されうる。有利となるようにこの測定は、脱離粒子の割合を時間の関数として与える。これは、固有の指数時間の法則characteristicexponentialtimelaw1koffに従う。よってkoffは2つ以上の力Fの値について測定されて良い。外力の存在しない状態での解離定数koffは、クラマースモデルを用いることによって、koffwexpと決定することができる非特許文献42を参照のこと。ここでwは係数で、ΔEは解離するために超えなければならないエネルギーバリアで、kBはボルツマン定数で、Tは実験の温度である。力Fが加えられるとき、エネルギーバリアは、エネルギーFaだけ減少する。ここでaはエネルギーの壁の固有距離であるこの値を知る必要はない。よって新たな解離定数は、koffwexpexpkoffexpとなる非特許文献43を参照のこと。よって少なくとも2つの力F1とF2について実験で得られた解離定数に基づいて、距離aを知ることなく、力が存在しない状態での解離定数koffを決定することが可能である。この方法の変化型が提案され、かつ利用可能である非特許文献44を参照のこと。たとえば第1分子と第2分子との間での平衡定数の測定は、付着時間と脱離時間の両方に対して長い時間待ちながら、粒子に付着する既知量の第2分子を注入することによって実行されて良い。第2分子と粒子が存在しない溶液によって低速で洗浄し、かつ、付着したままの粒子の割合を決定することによって、平衡状態で付着した濃度ひいては脱離した濃度が得られる。脱離濃度に対する付着濃度の比によって、反応の平衡定数が与えられる。待ち時間が脱離時間に対して短い場合、当該方法は、付着定数の測定を可能にする。付着粒子の量は時間に対して指数関数的に増大する。本発明の解析方法は、第1分子と相互作用しなかった第2分子と結合する粒子を検出する手順を有して良い。当該装置はこの場合、チャネルの流出口-つまり流れが到着する端部-で第1分子又は第2分子を検出する手段を有して良い。この検出は、粒子若しくは第2分子の物理的特性光の吸収、反射、若しくは散乱、蛍光、又は磁気若しくは電気特性及び又は化学的特性たとえばアッセイ用の他の反応物との相互作用に基づいて良い。この検出は、ある第2分子が第1分子と結合する一方で他の第2分子は結合しない間に分子をスクリーニングする方法において有利である。本発明の第3態様は、医薬開発の候補となる分子のスクリーニングにおいて当該方法又は装置を使用することである。本発明の方法又は装置は、分子同士での親和性の並列かつ高スループット測定にも用いられて良い。本発明の方法又は装置は、細胞間での相互作用又は細胞と分子との間での相互作用を探索するのにも用いられて良い。本発明の方法又は装置は、互いに結合し、又は支持体と結合する粒子の移動度を評価するのにも用いられて良い。本発明の方法又は装置は、結合した粒子の運動を評価するのに用いられて良い。本発明の方法又は装置は、ポリマー、核酸、又はタンパク質の伸縮、弾性、及び曲げを評価するのに用いられて良い。本発明の方法又は装置は、細胞膜の特性を評価するのにも用いられて良い。この場合、第1分子は細胞又は細胞膜であって良く、かつ、第2分子は細胞の膜分子又は膜タンパク質であって良い。他の利点は、添付図面によって示される以降の例によって当業者には十分理解されうる。本発明は実際、従来技術の課題を克服して上記の必要性を満たすことを可能にする。これまでの重要な研究に続いて、本願出願人は、分子間相互作用を解析する方法を開発した。当該方法の実施は、単純で、安価で、実用的で、かつ、分子間相互作用の分子スケールでの十分厳密な解析を可能にする。特に当該方法では、力を発生させるのにレーザーも磁石もAFMチップの使用する必要がなく、その結果を読み取るのに複雑な装置も必要としない。当該方法では、分子への損傷や変性を及ぼすことなくその分子間相互作用を解析することも可能となる。本発明は、非常に小さな分子とリガンドとの相互作用、又は、非常に小さな分子同士での相互作用の解析をも可能にする。さらに本発明は、少数さらには1つの第1分子と第2分子との間での相互作用を研究することをも可能にする。本発明はまた、多重化を実現する能力を有し、かつ、第1分子と第2分子からなる対同士の多数の相互作用を同時かつ一度に研究することをも可能にする。図1Aはマイクロ流体チャネルの構造を表している。図示されたマイクロ流体チャネルは、培養培地用の流入口、ナノ粒子溶液用の流入口、流出口、及び、それらの間に存在する測定領域を有する。図1Bは、顕微鏡による測定方法を表している。当該方法では、流れがナノ粒子及び第1分子と結合する第2分子に与えられる。第2分子はその受容体と結合するペプチド毒素で構成される。第1分子は、細胞膜及び毒素受容体が相互作用する細胞細胞骨格を含むのすべての要素で構成される。粒子に所定の流れを与えることで、その粒子に流体力学的な力が生じる。この力は第2分子に伝えられ、第1分子と第2分子との間での相互作用にこの力が及ぼす影響が観察されうる。図2Aは、時間t95~128sの間に流速75μlminの流れを与えた後、細胞膜表面での毒素タンパク質の受容体の運動単位μmをtの関数として表している。受容体の位置はナノ粒子の蛍光によって視覚化される。受容体は、流れの方向に移動し、その後その流れが与えられる前の初期位置に対して約2μmだけ移動した新たな位置で安定する。流れの方向に対して垂直な方向での移動は、その流れの方向での移動に比べて無視できる。流れが止まった後、受容体は初期位置の近くの位置に戻る。このように初期位置の近くの位置に戻るということは、粒子への流体力学的な力を介して受容体に加えられる力が、細胞の復元力と等しいことを示唆している。流れが止まるとき、細胞の復元力しか受容体に作用しない。このため受容体は、ストークスの定理Fγvによって決定される速度vで初期位置に戻る。ここで、γは膜と細胞骨格からなる系内の受容体の抗力係数で、Fは流れに起因する力である。よってvとFが分かることで、摩擦係数の決定が可能となる。図2B上図は、tの関数として表される一連の各異なる流速の流れ下図が与えられた後、初期位置に対する受容体の運動単位μmをtの関数として表している。流れのある状態と流れのない状態の平衡位置が示されている。破線の長方形は、図2Aで示された実験の部分を示している。図3は、一連の各異なる流速μlminで表されるの関数として、図2Bの実験と同一条件下で行われた実験から得られた、流れによって加えられた力が生じさせた平均の運動単位μmを表している。毒素受容体の運動は印加された力に対して線形依存する。示されているように、流れのある状態での平衡位置は、粒子への流体力学的な力を介して受容体に加えられる力が細胞による復元力と等しくなる位置に対応する。細胞の復元力は、フックの法則Fkxによってモデル化することができる。ここでkはスティフネス係数で、xは平衡位置に対する変位である。フックの法則によるモデル化によって、細胞の変位が弾性的であり、かつ、受容体の運動が可逆的であるという仮説が成立する。実際毒素受容体は初期位置に近い位置へ戻る。図3の実験データを線形にフィッティングさせると、スティフネス係数kを求めることができる。図4は、一連の異なる流速破線で示されているの流れf単位μlminが与えられた後、初期位置に対する受容体の運動単位μmを時間tの関数として表している。流れのある状態とない状態の平衡位置のみが示されている。複数の生体力学的効果がこの実験中に特定されうる。弾性変形状態が観測される。ここでは、流れが止まった後に、受容体が初期位置に戻る。流速30μlminの流れが加えられた後、その流れが止まった後でも受容体は初期位置に戻らない。これは塑性変形状態である。最終的に、流速50μlminの流れが加えられることで、毒素は受容体から脱離する。ある数の脱離事象を観察することは、本明細書で説明しているように、毒素と受容体との間での解離定数koffを決定するのに用いられて良い。図5は、白色光の透過によって得られた混合MDSKイヌ腎臓由来細胞の像を表している。図2Bのような一連の異なる流速の流れを加えた後に得られた4つの受容体の運動経路が、位置XPX単位μmと位置YPY単位μmで表され、図中の黒い線で示されている。この図はこの手法が多重化を行うことが可能であることを示している。1粒子の特性及びペプチド毒素への結合粒径が20~80nmのユーロピウムイオンがドープされたバナジン酸イットリウムのナノ粒子が、Y3、Eu3、及びNa3VO4を共沈されることによって得られる非特許文献16を参照のこと。これらのナノ粒子は蛍光である。これらのナノ粒子内部のユーロピウムイオンは、466nmで励起され、かつ、617nmを中心とした蛍光を放出しうる。粒子は、ホモ二官能性架橋剤であるビス-スベリン酸を介してペプチド毒素と結合する。結合方法は、非特許文献4546でより詳細に記載されているが、その手順は以下の通りである。i遠心分離によってナノ粒子をサイズで選択するiiNPsを水溶液からジメチルスルホキシド溶媒へ移すiiiナノ粒子とBS3架橋剤との間での第1アシル化反応を起こすivNPsをDMSOから水溶液に移し、ナノ粒子-BS3とタンパク質との間での第2反応を起こすv自由タンパク質とタンパク質が結合したナノ粒子とを遠心分離により分離する選ばれたタンパク質は、嫌気性バクテリアであるB型及びD型ボツリヌス菌により生成されるイプシロン毒素である。毒素は、MDCK細胞の膜内の洗浄耐性を有する領域内に存在する固有の受容体と結合する非特許文献4748を参照のこと。単一分子をナノ粒子に付着されることが望ましく、かつ、手順ivの反応が100近い効率を有するとき、手順ivを実行するのにナノ粒子の濃度と関心分子の濃度との比を11付近に選択することが必要である。反応前のBS3が結合したナノ粒子の濃度と生物分子の濃度は、これらの吸収によって決定されて良い。反応後では生物分子の吸収とナノ粒子の吸収が重なるため、タンパク質の濃度は、標準的な試験-たとえばブラッドフォード法-によって決定されて良い。手順ivの反応効率が100未満であることが分かっている場合、ナノ粒子の濃度と関心分子の濃度との比もそれに従って修正されて良い。ナノ粒子に結合する分子の数はポアソン分布に従う。よって分子が結合していないナノ粒子と、1つ以上の分子と結合するナノ粒子と、3分子以上と結合する小数のナノ粒子が存在する。分子が結合していないナノ粒子は、膜受容体と相互作用せず、測定を妨害しない。2又は3つの分子と結合する、所与のサイズのナノ粒子の場合、分子が2つ以上の受容体と相互作用することが可能なように配置される確率は無視できる。2マイクロチャネルの特性ポリジメチルシロキサンで構成されるマイクロチャネルがソフトリソグラフィによって準備される非特許文献18を参照のこと。マイクロチャネルの寸法は、高さが50μm、幅が500μm、長さが15cmである。マイクロチャネルはY字形状の構造を有し、かつ、2つの流入口を有する。前記2つの流入口のうちの一は、ペプチド毒素と結合するナノ粒子を注入するためで、前記2つの流入口のうちの他は、所定の液体流を発生させるためである。マイクロチャネルはまた、容器と接続する流出口をも有する。容器は、そのマイクロチャネルに気泡を導入する危険性を生じさせること縛、流れの方向を調節することを可能にする。3マイクロチャネルへの細胞の注入培養培地DMEM10のウシ胎児血清1のペニシリン-ストレプトマイシン中のMDCK細胞の濃縮溶液~6×106個mlが、マイクロチャネルに注入される。続いて細胞は37°Cかつ5CO2で1日間培養される。そのように培養されることで、細胞は、マイクロチャネルの表面に付着して、その内部で分化する。気泡の生成は避けなければならない。なぜならマイクロチャネルを通過する気泡は細胞を脱離させるか、又は、表面を劣化させる恐れがあるからである。このため、マイクロチャネルは完全に培養培地で満たされる。細胞の注入前に1日間培養培地でマイクロチャネルを満たすことで、そのマイクロチャネル内に存在する空気をも追い出すことが可能となる。4マイクロチャネルへのナノ粒子が結合したペプチドの注入ペプチド毒素が結合したナノ粒子が、バナジン酸イオンの濃度が05mMの最小培地からなる溶液HBSS10mMのHEPES1のFCS中で懸濁される。ナノ粒子は、シリンジドライバを用いることによって顕微鏡に注入される。粒子が結合した毒素が細胞と結合することを可能にするため、培養が5~30分間行われる。その間流れは与えられない。この段階では、これらの操作が細胞を劣化させないこと、及び、その細胞は依然としてマイクロチャネルの表面に付着していることを、白色光透過及び細胞の蛍光信号の観察によって確認することが必要である。粒子が、細胞の付着するマイクロチャネルの領域に確実に到達したことを蛍光顕微鏡によって確認することも有用である。5マイクロチャネル内での流れの付与、及び、加えられた力の決定流れによる試料の操作が顕微鏡内で実行される。所定の流れがマイクロチャネル内で与えられる。所定の流れは、シリンジドライバを用いて単位時間あたりに流体の選ばれた体積を注入することによって生成される。使用される流体は最小培地HBSS10mMのHEPES1のFCSである。この流体注入方法は、マイクロチャネル内でのポアズイユ型の流れを生成する。流体の流れはどこであっても壁に対して平行で、流体の速度は壁ではゼロで、かつ、圧力は流れの幅の範囲内では変化しない。実験中、流れは0~200μlminで変化する。粒子に作用する抗力は、F6πμRvで表されるストークスの関係式によって決定される。ここで、μは流体の粘度を表し、Rは粒子の流体力学的半径を表し、vは粒子の周辺での流体の速度を表す。この関係式は無限長のチャネルの近似である。粒子は、その流体力学的半径に匹敵する細胞からの距離に位置するので、上式には補正因子が適用されなければならない非特許文献12乃至15を参照のこと。流体の粘度は、圧力差が加わる端部で毛細管を貫流するのに必要な時間を測定することによって決定される非特許文献17を参照のこと。20°Cで103Nsm2の粘度が測定された。各粒子の半径は、非特許文献46に記載された方法を用いて単位時間あたりに放出される光子数によって決定される。球形粒子については、流体力学的半径はそのようにして決定された値に非常に近い。10μlminの流速については、流体の平均速度は7mmsである。ポアズイユの法則に従うと、流体の速度は、チャネル中心で最大となる放物状のプロファイルを有する。10μlminの流速については、チャネル中心での最大速度は10mmsである。これらの速度は、マイクロチャネルを損傷させず、そのマイクロチャネルの表面からの細胞の脱離を生じさせない。さらに制御された実験によって、これらの流速が、細胞の運動を生じさせず、その細胞内部での微小管の分布を変化させず、細胞膜での脂質ラフトの分布を変化させないことを判断することが可能となる。粒子周辺での流体の速度は、流れの中で浮遊する対象物を監視することによって決定された。この場合、蛍光物質Y06Eu04VO4のナノ粒子を用いて監視された。この研究のため、流れは、0~200μlminの速度で一方向に加えられる。流速の値は、様々な流速の値、ひいては力の値についての粒子の運動を測定するように、段階的に増大する。流速の各値は約30秒間与えられ、その後流れは約30秒間中断され、その後新たな流速の値が適用される図2Bの下図を参照のこと。本願のナノ粒子の場合では、加えられた力は、受容体あたり0~数pNで変化して良い。6粒子によって放出される蛍光の像の記録粒子は、粒子により放出される蛍光信号を広視野蛍光顕微鏡によって監視することによって監視される。ナノ粒子は、530DCXR二色ミラークロマ社製を用いて4658nmのアルゴンレーザーによって励起される。レーザーは、顕微鏡の対物レンズ63倍、NA14の油浸対物レンズZeiss社製によって集束される。励起領域の中央での高さは82μmである。粒子によって放出される蛍光は、同一の対物レンズを用いて収集され、かつ、6178M帯域フィルタクロマ社製を用いてフィルタリングされる。蛍光像は、EMCCDカメラRoperScientificQaunt:512SCによって記録される。像1枚の取得時間は200msである。7粒子の運動の像解析及び監視像は、バックグラウンドノイズを除去するため、ローパスフィルタ及びラプラスフィルタによってフィルタリングされる。最初の手順後、粒子の位置が、2Dガウス関数による修正によって決定される。これによって、顕微鏡の分解能によって課される限界を超えた精度で粒子の発光スポットの中心を与えることが可能となる。順次記録される像から得られる一連の粒子の位置によって、その粒子の運動の測定は可能となる。一定の流速が与えられた後、粒子は移動し、数秒後に新たな平衡位置に到達する。図2A及び図2B上の図での粒子の運動は、流れが与えられる前の初期位置に対して示される。平均の運動を得るためには、所与の流速が与えられた後の平衡状態で測定されたすべての位置の平均値が計算される。この平均値と流れが与えられる前の初期位置との差異が、平均運動と呼ばれる。この平均運動は、様々な流速の値について計算された、加えられた力の関数として図3に示されている。