第1一本鎖DNA6および第2一本鎖DNA7からなる二本鎖DNA中の二本鎖標的配列1中に含まれるSNP塩基種8を、アレル特異的プライマ-を用いて判別するSNP判別法であって、前記二本鎖標的配列1は、一本鎖標的配列1aおよび相補的一本鎖標的配列1bからなり、前記第1一本鎖DNA6は、3’末端-第1非増幅配列6a-前記一本鎖標的配列1a-第2非増幅配列6b-5’末端からなり、前記第2一本鎖DNA7は、5’末端-第3非増幅配列7a-前記相補的一本鎖標的配列1b-第4非増幅配列7b-3’末端からなり、前記相補的一本鎖標的配列1b、第3非増幅配列7a、および第4非増幅配列7bは、それぞれ、前記一本鎖標的配列1a、前記第1非増幅配列6a、および第2非増幅配列6bと相補的であり、DNAポリメラ-ゼ、デオキシヌクレオシド三リン酸、前記二本鎖DNA67、第1のプライマ-4、第2のプライマ-5、および第1ブロック核酸20を混合し、ポリメラ-ゼ連鎖反応を用いて前記二本鎖標的配列1を増幅する工程Aを含み、ここで、前記第1のプライマ-4および前記第2のプライマ-5は、いずれも、前記DNAポリメラ-ゼによる伸長反応のための起点として作用し、前記SNP塩基種8は、第一の一本鎖DNA6上の前記第1のプライマ-4が結合する領域内に存在し、前記第1のプライマ-4は、SNPの塩基8に相補的な配列である、アレル特異的プライマ-であって、前記第1のプライマ-4は、前記一本鎖標的配列1aに含まれる3’末端側の配列の部分に相補的であり、前記第2のプライマ-5は、前記相補的一本鎖標的配列1bに含まれる3’末端側の部分の配列に相補的であり、前記第1ブロック核酸20は、前記DNAポリメラ-ゼによる伸長反応のための起点として作用せず、前記第1ブロック核酸20は、前記第3非増幅配列7aの一部と相補的である、SNP判別方法。前記第1ブロック核酸20は、3’末端に位置するヌクレオチドに含まれる糖の3位のOH基が、水素、リン酸基、アミノ基、ビオチン基、チオ-ル基、またはこれらの誘導体によって置換または修飾されているDNAからなる、請求項1に記載のSNP判別方法。前記第1ブロック核酸20は、3’末端に位置するヌクレオチドに含まれる糖の3位のOH基が、水素、リン酸基、アミノ基、ビオチン基、チオ-ル基、またはこれらの誘導体によって置換または修飾されているLockedNucleicAcidからなる、請求項1に記載のSNP判別方法。前記第1ブロック核酸20は、PeptideNucleicAcidからなる、請求項1に記載のSNP判別方法。前記工程Aにおいて、前記DNAポリメラ-ゼによる伸長反応のための起点として作用せず、かつ前記第2非増幅配列6bの一部と相補的である第2ブロック核酸30も混合される、請求項1に記載のSNP判別方法。前記第2ブロック核酸30は、3’末端に位置するヌクレオチドに含まれる糖の3位のOH基が、水素、リン酸基、アミノ基、ビオチン基、チオ-ル基、またはこれらの誘導体によって置換または修飾されているDNAからなる、請求項5に記載のSNP判別方法。前記第2ブロック核酸30は、3’末端に位置するヌクレオチドに含まれる糖の3位のOH基が、水素、リン酸基、アミノ基、ビオチン基、チオ-ル基、またはこれらの誘導体によって置換または修飾されているLockedNucleicAcidからなる、請求項5に記載のSNP判別方法。前記第2ブロック核酸30は、PeptideNucleicAcidからなる、請求項5に記載のSNP判別方法。しかしながら、非特異に結合する可能性を予め完全に予測することは難しく、この方法により非特異的な結合反応を完全に防ぐことには限界があった。本発明は、前記従来の課題を解決するために、ASPを用いたPCRにおいて、プライマ-の反応特異性の低下によって引き起こされる、非特異的な増幅反応を抑制し、より明確なSNP判別を可能とする方法を提供することを目的とする。前記従来の課題を解決するために、本発明のSNP判別方法は、第1一本鎖DNA6および第2一本鎖DNA7からなる二本鎖DNA中の二本鎖標的配列1中に含まれるSNPの塩基種8を、アレル特異的プライマ-を用いて判別するSNP判別法であって、前記二本鎖標的配列1は、一本鎖標的配列1aおよび相補的一本鎖標的配列1bからなり、前記第1一本鎖DNA6は、3’末端-第1非増幅配列6a-前記一本鎖標的配列1a-第2非増幅配列6b-5’末端からなり、前記第2一本鎖DNA7は、5’末端-第3非増幅配列7a-前記相補的一本鎖標的配列1b-第4非増幅配列7b-3’末端からなり、前記相補的一本鎖標的配列1b、第3非増幅配列7a、および第4非増幅配列7bは、それぞれ、前記一本鎖標的配列1a、前記第1非増幅配列6a、および第2非増幅配列6bと相補的であり、DNAポリメラ-ゼ、デオキシヌクレオシド三リン酸、前記二本鎖DNA67、第1のプライマ-4、第2のプライマ-5、および第1ブロック核酸20を混合し、ポリメラ-ゼ連鎖反応を用いて前記二本鎖標的配列1を増幅する工程Aを含み、ここで、前記第1のプライマ-4および前記第2のプライマ-5は、いずれも、前記DNAポリメラ-ゼによる伸長反応のための起点として作用し、前記SNP塩基種8は、第一の一本鎖DNA6上の前記第1のプライマ-4が結合する領域内に存在し、前記第1のプライマ-4は、SNPの塩基8に相補的な配列である、アレル特異的プライマ-であって、前記第1のプライマ-4は、前記一本鎖標的配列1aに含まれる3’末端側の配列の部分に相補的であり、前記第2のプライマ-5は、前記相補的一本鎖標的配列1bに含まれる3’末端側の部分の配列に相補的であり、前記第1ブロック核酸20は、前記DNAポリメラ-ゼによる伸長反応のための起点として作用せず、前記第1ブロック核酸20は、前記第3非増幅配列7aの一部と相補的である、ことを特徴としたものである。本発明により、ASPを用いたPCRにおいて、非特異的な増幅を抑制することができ、より明確なSNP判別が可能なSNP判別法が提供される。以下、本発明に係わるSNP判別法の具体的な実施の形態を説明する。ただし、本発明はこれに限定されるものではない。本実施の形態では、図1および図2を用い、第1のプライマ-4がASPである場合を例にとって説明する。従来のPCRでは、図1に示すように、第1一本鎖DNA6は3’末端-第1非増幅配列6a-一本鎖標的配列1a-第2非増幅配列6b-5’末端からなり、第2一本鎖DNA7は5’末端-第3非増幅配列7a-相補的一本鎖標的配列1b-第4非増幅配列7b-3’末端からなる。第1のプライマ-4は一本鎖標的配列1aの3’末端部分6cに相補的に結合する。SNP塩基8は第1一本鎖DNA6の鎖上に存在し、かつ第1のプライマ-4が結合する領域内に存在する。一方、第2のプライマ-5は、相補的一本鎖標的配列1bの3’末端部分に相補的に結合する。したがって、第1のプライマ-4と第2のプライマ-5からDNA伸長反応が良好におこり、PCRが行なわれると、得られる増幅二本鎖DNA配列は、望まれる増幅二本鎖DNA配列2が得られる。しかし、背景技術でも記したとおり、ASPのようなプライマ-を用いた場合はそれ以外の非特異的な増幅により望まれない産物が得られる場合があった。これを解決するのが本発明である。ここで、本発明におけるブロック核酸20について図2を用いて説明する。本発明の特徴は、背景技術に記載のASPを用いたPCRにおけるSNP判別法にブロック核酸を加えることである。具体的にはDNAポリメラ-ゼ、デオキシヌクレオシド三リン酸dATP、dCTP、dGTP、dTTP、鋳型DNA、第1のプライマ-および第2のプライマ-を含むPCR反応溶液にブロック核酸を共存させてPCRを行なう。第1のプライマ-及び、第2のプライマ-はフォワ-ドプライマ-とリバ-スプライマ-の関係にあって、両プライマ-の3’末端より伸長反応が進み、標的配列を増幅する。本実施の形態では、第1のプライマ-か第2のプライマ-の何れかはASPである。好ましくは上記反応溶液にDNAポリメラ-ゼが安定に働くための緩衝液、塩類を加えても良い。ブロック核酸20は、DNAポリメラ-ゼによる伸長反応のための起点として作用せず、第3非増幅配列の一部と相補的である。本発明におけるブロック核酸30は、DNAポリメラ-ゼによる伸長反応のための起点として作用せず、第2非増幅配列6bの一部と相補的である。本発明のPCRにおいては上記ブロック核酸20とブロック核酸30の少なくともいずれか一方、好適には両ブロック核酸が反応溶液中に加えられる。また上述の通り、ブロック核酸はDNAポリメラ-ゼによる伸長反応の起点とならない合成オリゴ核酸である。したがってブロック核酸としては、例えば、3’末端にDNAポリメラ-ゼによる伸長反応の起点とならない修飾が施されているDNAか、もしくはLockedNucleicAcidが挙げられる。修飾の種類としては好適には、リン酸化、アミノ化、蛍光修飾、ビオチン等が含まれるが、これに限るものではない。またブロック核酸は、3’末端のヌクレオチドがジデオキシヌクレオチドであるDNAやLNAであっても良い。またブロック核酸は、伸長反応の起点とならない核酸類似体であってもよい。伸長反応の起点とならない核酸類似体としては、例えばPeptidenucleicacidPNAなどが挙げられる。本発明におけるブロック核酸は標的配列1の近傍に結合するように設計されることが望ましい。ここでいう近傍とは標的配列1から数塩基から数千塩基以内の領域である。ブロック核酸の配列は、好ましくはプライマ-のTm値と同等以上になるように設計される。反応溶液中におけるブロック核酸の濃度は、プライマ-の濃度より大きいことが好ましい。例えばプライマ-が0.1μM~1μMの濃度範囲であれば、ブロック核酸はその5倍以上の濃度で加えられることが好ましい。本発明に用いられるDNAポリメラ-ゼは、一例として、TaqDNAPolymeraseなどが挙げられるが、これに限定されるものではなく、PCRで使用可能なものであれば、どのようなものでも使用することができ、適宜用途に合わせて選択すればよい。ただし、鎖置換型の活性を持ったポリメラ-ゼは使用することができない。DNAポリメラ-ゼの濃度は通常、0.5~2.5Unit/100μLで使用されることが望ましい。緩衝液は上記DNAポリメラ-ゼが反応するために適切な溶媒であれば何でもよく、一般的にはTris-HClが使用され、pHは7~10、濃度は10mM~100mMで調製されることが望ましい。塩類は好適には塩化マグネシウムが使用されており、1mM~5mMで添加され、好適な範囲は1.5mM~3mMである。デオキシヌクレオシド三リン酸は4種類dATP、dTTP、dGTP、dCTPよりなり、通常、各々が等量で20μM~200μMで含まれる。本発明における標的配列とは、背景技術で説明したようにSNP塩基を含み、一対のプライマ-で囲まれ、PCRで増幅される領域を示す。また、本発明におけるプライマ-とは、DNAポリメラ-ゼによる伸長反応の起点となる合成オリゴ核酸である。プライマ-の長さは、伸長反応のためのプライマ-として働くのに十分な長さであればよく、通常、15bp~50bpの範囲で設計される。より好ましくは、20bp~25bpで設計される。また、Tm値によって規定することもできる。通常、Tm値が45°C~75°C、より好ましくは55°C~70°Cの間になるように設計される。本発明に使用されるASPとは、背景技術に記載したように、SNP塩基が特定の塩基種の場合にのみ効率良く伸長反応が起こるように設計されたプライマ-のことである。第1のプライマ-、もしくは第2のプライマ-のいずれか一方がASPとなるように設計される。本発明におけるASPを用いたPCRは、二本鎖DNAの熱変性、プライマ-のハイブリダイゼ-ション、ならびにDNAポリメラ-ゼによるDNAの伸長反応が行われる任意の条件下で実施される。二本鎖DNAの熱変性は通常、94°C~100°Cで1秒から100秒の間で行われる。ハイブリダイゼ-ション条件は、通常、Tm値から約5°C下げた温度条件で、50~70°Cで1秒から100秒間で行われる。ポリメラ-ゼによる伸長反応は、酵素が最適に反応する条件を考慮して条件が設定される。Taqポリメラ-ゼが使用される場合、通常、65~74°Cで反応時間は1秒~3分程度で実施される。アニ-ル工程と伸長工程を同一温度で行うサイクルの場合でもよく、その場合通常、60~70°Cで1秒~3分程度で行われる。また、上記反応サイクルの前後に、DNAの変性工程や、ポリメラ-ゼの伸長反応を付加する工程を適宜加えても良い。実施の形態1以下に本発明におけるASP-PCR法の実施例を示すが、以下の実施例で本発明の内容が限定されるものではない。実施例1:本実施例では、ヒトのアセトアルデヒドデヒドロゲナ-ゼ2ALDH2遺伝子の第12エクソンの114番目のSNP塩基を判別する例を示す。ALDH2は、飲酒した際に生成されるアセトアルデヒドを分解する酵素である。ALDH2の487番目のアミノ酸を決める塩基配列の違いにより、3つの遺伝型に分かれる。すなわち、ALDH2の対立遺伝子に見られる第12エクソンの114番目の塩基がいずれもグアニンであるG/Gタイプ野生型と片方がグアニンで他方がアデニンであるG/Aタイプ、そしていずれもがアデニンであるA/A変異型である。本実施例で用いた第1のプライマ-以下、ALDH2-Fと表記と第2のプライマ-以下、ALDH2-Wt-Rと表記の配列を表1に示す。これらの内、ALDH2-Wt-RがASPに該当し、ALDH2-Wt-Rは、上記SNP塩基が野生型の場合にDNA伸長反応が起こるように設計されている。具体的には、ALDH2-Wt-Rの3’末端塩基がSNP対応塩基である。またALDH2-Wt-Rの3’末端から2番目および3番目の二塩基は、鋳型に対して非相補的になるように設計されている表1、下線部。また、ALDH2-FとALDH2-Wt-Rは、アセトアルデヒドデヒドロゲナ-ゼ2遺伝子中の144bpの標的配列がPCRにより増幅されるように設計されているただし上記SNP塩基が変異型の場合は、ALDH2-Wt-RからのDNA伸長反応効率は極めて悪いため、この標的配列は増幅されない。。ブロック核酸の配列を表2に示す。ALDH2-Block1は標的配列から3塩基上流に結合する実施の形態に記載のブロック核酸20に相当し、22塩基からなる。ALDH2-Block1の3’末端のヌクレオチドに含まれる3位の糖はリン酸化によって修飾されている。鋳型DNAは、上記SNP塩基が野生型のホモである被験者および変異型のホモである被験者の血液100μLからDNAMicroKitQIAGEN社製を用いて抽出したゲノムDNAを10ng/μLになるように調製して得た。検体の遺伝子型はシ-ケンス解析により確認した。PCRの反応溶液は以下の通りであった。1×MightyAmpBufferTaKaRa社製0.25U/10μLMightyAmpDNAPolymeraseTaKaRa社製1μMALDH2-F1μMALDH2-R0.5ng/μLの野生型DNAもしくは変異型DNA、および10μMALDH2-Block1/10000SYBRGreenITaKaRa社製全量:10μLPCRの反応条件は以下のとおりであった。すなわち、まず98°Cで2分間処理した。その後、98°Cで1秒間熱変性工程、55°Cで1秒間アニ-リング工程、68°Cで28秒間DNA伸長反応工程からなるサイクルを60サイクル行った。PCR反応をAppliedBiosystems7300リアルタイムPCRシステムを用いて行った。リアルタイムPCRの増幅曲線の結果を図3に示す。図3の縦軸にSYBRGreenIの蛍光強度、横軸に時間を示す。図3から明らかなように、野生型を鋳型に用いた場合のみ効率的な増幅が起こっている。さらにBioAnalyzerAgilent社製を用いて、PCR反応物を電気泳動に供した。図4に野生型を鋳型に用いたPCRの電気泳動の結果を、図5に変異型を鋳型に用いたPCRの電気泳動結果を示す。図4と図5の縦軸は増幅産物の濃度に比例した蛍光強度を示しており、横軸は時間を示している。図4と図5を比較すると、野生型を鋳型とした場合は144bpからなる標的配列のみが特異的に増幅されていた。一方、変異型を鋳型とした場合では増幅産物は全く検出されなかった。図4、図5中のMarkerは電気泳動キットに付属されているDNAMarkerである。また図5中の標的配列以下のピ-クはプライマ-ダイマ-である。比較例1:本比較例1では、実施例1における反応溶液のブロック核酸を蒸留水に置換したこと以外は、実施例1と同様のPCR反応を実施した。図6に比較例1のリアルタイムPCRの増幅曲線の結果を示す。図6の縦軸はSYBRGreenIの蛍光強度を、横軸は時間を示している。また、図7に野生型を鋳型に用いた場合のPCRの電気泳動結果を、図8に変異型を鋳型に用いた場合のPCRの電気泳動結果を示す。図7と図8の縦軸は増幅産物の濃度に比例した蛍光強度を示しており、横軸は時間を示している。まず、図6より、野生型を鋳型に用いた場合と変異型を鋳型に用いた場合において、前者の増幅曲線の方が後者に比べ早く立ち上がっていることが分かる。しかしながら、その差はわずか2.5分でしかなかった。ここで、実施例1におけるリアルタイムPCR結果を示す図3と比較すると、ブロック核酸を用いた実施例1では変異型の増幅を抑え、立ち上がりの差が明らかに広がっていることがわかる。このことは第1のブロック核酸20が明確なSNP判別を行なうことに寄与していることを示す。また図7より、野生型を鋳型とした場合では144bpの標的配列が増幅産物だけでなく、330bpと612bpのDNAが非特異的に増幅されていることが分かる。また、図8においても、変異型を鋳型とした場合では標的配列の増幅は起こっていないが、それ以外の324~610bpのDNAが増幅されており、非特異的な増幅が起こっている。実施例1における図4と図5では、このような非特異的な増幅は全く起こっていない。このことから第1のブロック核酸20が非特異的な増幅を抑制する効果に寄与していることが示された。図7、図8中のMarkerは電気泳動キットに付属されているDNAMarkerである。また図8中の標的配列以下のピ-クはPDである。アジレント電気泳動の解析結果から算出された増幅産物の濃度の総和を示す実施例1におけるグラフを図9に、比較例1におけるグラフを図10に示した。図10の比較例1では野生型、変異型とも標的配列以外の非特異的な増幅が起こっているため、増幅産物の濃度の総和が野生型で75.47ng/μLであるのに対し、変異型は60.47ng/μLであり、有意な差がない。一方、ブロック核酸を加えた実施例1の野生型では、標的配列のみの特異的な増幅が起こっている。変異型では全く何の増幅も起こっていない。その結果、増幅産物の濃度の総和は野生型で57.69ng/μLであるのに対し、変異型では0ng/μLであり、完全にバックグラウンドを抑制することができた。すなわち、非特異的な増幅の抑制効果は、PCRの反応副産物として得られるピロリン酸濃度を指標としてSNP塩基を判別する検出手法においても、SNP塩基種の違いによる差を明確にし、有用であることがわかる。以上のように、ブロック核酸を用いることでリアルタイムPCRにおいては、野生型と変異型で立ちあがり時間の差が拡大し、明確なSNP判別が可能となった。さらに、ブロック核酸は非特異的な増幅を抑制しており、これは、ピロリン酸を検出する検出手法においてもバックグラウンドを抑え、明確な判別を可能にする効果に寄与することを示す。実施例2:本実施例では、ヒトのアセトアルデヒドデヒドロゲナ-ゼ2遺伝子の第12エクソンの114番目のSNP塩基を判別する例において、SNP塩基が変異型の場合、増幅可能なASPを用いた例を示す。第1のプライマ-以下、ALDH2-Fと表記と第2のプライマ-以下、ALDH2-Mt-Rと表記の配列を表3に示す。本実施例では第2のプライマ-がASPに該当し、ALDH2-Wt-Rは、上記SNP塩基が変異型の場合にDNA伸長反応が起こるように設計されている。具体的には、ALDH2-Mt-Rの3’末端塩基がSNP対応塩基である。またALDH2-Mt-Rの3’末端から2番目および3番目の二塩基は、鋳型に対して非相補的になるように設計されている表3、下線部。また、ALDH2-FとALDH2-Mt-Rは、アセトアルデヒドデヒドロゲナ-ゼ2遺伝子中の144bpの標的配列がPCRにより増幅されるように設計されているただし上記SNP塩基が野生型の場合は、ALDH2-Mt-RからのDNA伸長反応効率は極めて悪いため、この標的配列は増幅されない。ブロック核酸の配列を表4に示す。ALDH2-Block1は標的配列から3塩基上流に結合する実施の形態に記載のブロック核酸20に相当し、22塩基からなる。ALDH2-Block2は標的配列から6塩基下流に結合する実施の形態に記載のブロック核酸30に相当し、19塩基からなる。ALDH2-Block1とALDH2-Block2の3’末端のヌクレオチドに含まれる3位の糖はリン酸化によって修飾されている。鋳型DNAは、上記SNP塩基が野生型のホモである被験者および変異型のホモである被験者の血液100μLからDNAMicroKitQIAGEN社製を用いて抽出したゲノムDNAを10ng/μLになるように調製して得た。検体の遺伝子型はシ-ケンス解析により確認した。PCRの反応溶液は以下の通りである。1×MightyAmpBufferTaKaRa社製0.25U/10μLMightyAmpDNAPolymeraseTaKaRa社製1μMALDH2-F1μMALDH2-R0.5ng/μLの野生型DNAもしくは変異型DNA、および10μMALDH2-Block1/10000SYBRGreenITaKaRa社製全量:10μLPCR増幅を、以下のサ-マルプロファイル:98°Cで2分間を1サイクル、98°Cで1秒間変性のためと55°Cで1秒間アニ-ルのためと68°Cで28秒間DNA伸長のためを60サイクル、で行った。PCR反応をAppliedBiosystems7300リアルタイムPCRシステムを用いてモニタリングした。図11はリアルタイムPCRの増幅曲線の結果を示す。図11の縦軸はSYBRGreenIの蛍光強度を、横軸は時間を示している。図11から明らかなように、変異型を鋳型に用いた場合のみ効率的な増幅が起こっている。さらにBioAnalyzerAgilent社製を用いて、PCR反応物を電気泳動に供した。図12に変異型を鋳型に用いたPCRの電気泳動の結果を、図13に野生型を鋳型に用いたPCRの電気泳動結果を示す。図12と図13の縦軸は増幅産物の濃度に比例した蛍光強度を示しており、横軸は時間を示している。図12と図13を比較すると、変異型を鋳型とした場合は144bpの塩基対からなる標的配列のみが特異的に増幅されていた。一方、野生型を鋳型とした場合は81bpの非特異的な増幅が見られるが、標的配列より短く、PCRの反応副産物として得られるピロリン酸濃度を指標としてSNP塩基を判別する検出手法においても、ほとんど問題にならない。図12、図13中のMarkerは電気泳動キットに付属されているDNAMarkerである。また図12、図13中の標的配列以下のピ-クはPDである。比較例2:本比較例2では、実施例2における反応溶液のブロック核酸を蒸留水に置換したこと以外は、実施例2と同様のPCR反応を実施した。図14に比較例1のリアルタイムPCRの増幅曲線の結果を示す。また、図15に変異型を鋳型に用いた場合のPCRの電気泳動結果を、図16に野生型を鋳型に用いた場合のPCRの電気泳動結果を示す。図14の縦軸はSYBRGreenIの蛍光強度を、横軸は時間を示している。図15と図16の縦軸は増幅産物の濃度に比例した蛍光強度を示しており、横軸は時間を示している。まず、図14より、変異型を鋳型に用いた場合と野生型を鋳型に用いた場合において、前者の増幅曲線の方が後者に比べ早く立ち上がっていることが分かる。しかしながら、その差は5.6分でしかなく、有意な差ではなかった。ここで、実施例2におけるリアルタイムPCR結果を示す図11と比較すると、ブロック核酸を用いた実施例2では明らかに立ち上がりの差が広がっていることがわかる。このことは第1のブロック核酸20と第2のブロック核酸30が明確なSNP判別を行なうことに寄与していることを示す。また、図15の変異型を鋳型とした場合では144bpの標的配列が増幅産物だけでなく、303bpの塩基対からなる2本鎖DNAが非特異的に増幅されている。図16の野生型を鋳型とした場合では144bpの標的配列の増幅は起こっていることから、ASPの機能を果たせていないことが示唆され、さらにそれ以外の300bpと351bpの塩基対からなる2本鎖DNAが非特異的に増幅されている。実施例2における図12と図13では、このような非特異的な増幅は全く起こっていない。このことから第1のブロック核酸20と第2のブロック核酸30が非特異的な増幅を抑制する効果に寄与していることが示された。アジレント電気泳動の解析結果から算出された増幅産物の濃度の総和を示す実施例2におけるグラフを図17に、比較例2におけるグラフを図18に示した。図18の比較例2では変異型、野生型とも標的配列以外の非特異的な増幅が起こっているため、増幅産物の濃度の総和が比較例2では変異型の68.86ng/μLに対して、野生型では94.46ng/μLであり、標的配列より塩基対の大きな非特異的な増幅が多いことが原因となり、野生型の方が産物量の総和は大きくなってしまっている。これは、ピロリン酸を測定する検出手法においては、間違った判別結果を導く恐れがある。それに対し、ブロック核酸を加えた実施例2では変異型では標的配列のみの特異的な増幅が起こっている。野生型でもわずかに非特異的な増幅が見られるものの、各々の濃度の総和は変異型では、64.34ng/μLであるのに対し、野生型ではわずか4.79ng/μLであり、有意な差を得ることができている。すなわち、非特異的な増幅の抑制効果は、PCRの反応副産物として得られるピロリン酸濃度を指標としてSNP塩基を判別する検出手法においても、SNP塩基種の違いによる差を明確にし、有用であることがわかる。以上のように、ブロック核酸を用いることでリアルタイムPCRにおいては、野生型と変異型で立ちあがり時間の差が拡大し、明確なSNP判別が可能となった。さらに、ブロック核酸は非特異的な増幅を抑制しており、これは、ピロリン酸を検出する検出手法においてもバックグラウンドを抑え、明確な判別を可能にする効果に寄与することを示す。