"培養液上清、あるいは、菌体破砕物を分析することによりアザ糖が検出されるアザ糖を生産する微生物。バチルスに分類され、アザ糖の生産能を有する請求項1のアザ糖を生産する微生物。前記アザ糖が1-デオキシノジリマイシンであることを特徴とする請求項1又は2記載のアザ糖を生産する微生物。16sRNA遺伝子が、配列表の配列番号1および、配列番号2に記載の塩基配列で示されるものであることを特徴とする請求項1乃至3のいずれか一項記載の微生物アザ糖を生産する微生物。前記微生物が、バチルスアミロリクエファシエンスAS385BacillusamyloliquefaciensAS385株FERMAP-22049または、バチルスサブティリスB4BacillussubtilisB4FERMAP-22050株であることを特徴とする請求項1乃至4のいずれか一項記載のアザ糖を生産する微生物。前述した特許文献1、非特許文献1~4の報告の中には1-デオキシノジリマイシンをはじめとするアザ糖の存在が示されていない、または定量的に示されていないので、推定にすぎない。本発明はアザ糖を含む食品、食品添加物、動物又は魚類用飼料および医薬品、化粧料等を提供することを最終目的とする。請求項1記載の発明は、培養液上清、あるいは、菌体破砕物を分析することによりアザ糖が検出されるアザ糖を生産する微生物である。請求項2記載の発明は、バチルスに分類され、アザ糖の生産能を有する請求項1のアザ糖を生産する微生物である。請求項3記載の発明は、前記アザ糖が1-デオキシノジリマイシンであることを特徴とする請求項1又は2記載のアザ糖を生産する微生物である。請求項4記載の発明は、16sRNA遺伝子が、配列表の配列番号1および、配列番号2に記載の塩基配列で示されるものであることを特徴とする請求項1乃至3のいずれか一項記載の微生物アザ糖を生産する微生物である。請求項5記載の発明は、前記微生物が、バチルスアミロリクエファシエンスAS385BacillusamyloliquefaciensAS385株FERMAP-22049または、バチルスサブティリスB4BacillussubtilisB4FERMAP-22050株であることを特徴とする請求項1乃至4のいずれか一項記載のアザ糖を生産する微生物である。本発明により、食品、または経口摂取可能な食品、食品添加物などとして利用可能な、1-デオキシノジリマイシンをはじめとするアザ糖を生産出来る微生物を提供することができる。1-デオキシノジリマイシンをはじめとするアザ糖を含む食品、食品添加物、動物又は魚類用飼料および医薬品、化粧料等を提供するという本発明の目的上、高い安全性が要である。本発明におけるアザ糖生産能を持つ微生物は、豆チ、大徳寺納豆、浜納豆、清国醤をはじめとする大豆発酵食品または、大豆由来原料を由来とする。これら食品は長い食経験を有することから、安全性については危惧するに及ばない。本発明においては、これらの食品中から単離された微生物を用いアザ糖の発酵生産、含有食品、添加物、動物又は魚類用飼料および医薬品、化粧品の生産を行う。本発明は、大豆発酵食品より分離されたバチルスアミロリクエファシエンスBacillusamyloliquefaciensAS385株寄託番号:FERMAP-22049および、バチルスサブティリスB4BacillussubtilisB4株寄託番号:FERMAP-22050を利用し、大豆発酵食品または、大豆由来原料を主成分とする培地を利用した発酵生産物、食品、動物又は魚類用飼料および医薬品、化粧料等を生産するものである。本発明の微生物の単離源としては、豆チ、大徳寺納豆、浜納豆、清国醤をはじめとする大豆発酵食品などを使用できる。これらに限定するものではないが、長期にわたり食経験がある物が良い。これら発酵食品を滅菌水に懸濁し、懸濁液の一部を、LB培地、標準寒天培地などに塗沫し、培地を37°Cで培養、現れた集落から釣菌し候補株とする。得られた候補株を液体培地にて培養し、その培養上清についてα-グルコシダーゼの阻害活性について評価を行う。培養液としては、アザ糖が生産されうる培地であれば何であっても良く、具体的には、大豆煮汁Brix2pH7.3を用いた培地やLB培地、2大豆ペプトンなどが挙げられる。培養は37°Cで3日間行い、13000rpmで5分間遠心分離を行ったあと、培養上清の一部を採取し、それを検体としてα-グルコシダーゼの阻害活性の測定を行う。α-グルコシダーゼ阻害活性評価を行う際は酵素としてパン酵母、ラット小腸、ウサギ小腸などの由来の物を使用し、基質としてはp-ニトロフェニル-α-D-グルコピラノシド、スクロース、マルトースなどを用いる。反応停止にはトリス塩酸系緩衝液、炭酸塩緩衝液などを用いる。本発明におけるα-グルコシダーゼとは糖のα-グリコシド結合を加水分解する反応を触媒する酵素のことである。よってα-グルコシダーゼ阻害活性とは、スクロース、マルトースを分解したときに生成する遊離のグルコース、フルクトースの量、合成基質p-ニトロフェニル-α-D-グルコピラノシドにおいては遊離してくるp-ニトロフェノールの量を指標とし、検体溶液の添加反応時の生成量、または吸光度の増加を、検体溶液無添加反応時の生成量または吸光度の増加で割った値を阻害率とする。なお阻害率が50を示したときの酵素反応時における検体濃度をIC50値として定義し、これをαグルコシダーゼ阻害活性の尺度とする。α-グルコシダーゼ阻害活性の評価の良かった菌株について、再度培養し遠心分離後、培養上清を凍結乾燥した。上述して得た検体を、特許文献2および非特許文献5、非特許文献6、非特許文献7などに記載されている方法例えば、試料を親水性相互液体クロマトグラフィーHILICで分離し、1-デオキシノジリマイシンを光散乱検出器で検出する方法によりアザ糖の検出と定量を行った。このようにして、本発明者らは後述する実施例に準じてバチルスアミロリクエファシエンスAS385株BacillusamyloliquefaciensAS385株およびバチルスサブティリスB4BacillussubtilisB4株を単離し、2010年12月16日に独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センターに寄託した。当該菌株はそれぞれFERMAP-22049、FERMAP-22050として寄託されている。以下、実施例に基づき本発明を詳細に説明するが、本発明はこれらに限定されるものではない。スクリーニング市販の納豆、浜納豆、稲藁、日本国内で輸入品の豆チおよび韓国国内の量販店で手に入れた清国醤を滅菌生理食塩水に懸濁した。懸濁液を培地1枚あたり100μl採取し、標準寒天培地上に塗沫、37°Cにて24時間培養した。培養後、形成されたいくつかの集落より釣菌し取得菌株とした。それぞれ、5mlの2大豆ペプトンにて37°Cにて3日間振盪培養した。培養液を13000rpm、5分間遠心分離し、上清を採取し、試料とした。培養上清を試料としてα-グルコシダーゼ阻害活性評価を行った。α-グルコシダーゼ阻害活性評価の方法は下記の通りである。腸アセトンパウダーラット由来SIGMA社0125gに50mMリン酸ナトリウム酸緩衝液/100mMNaClpH7.05mLを添加し、4°Cにて2時間以上静置した。4°C13000rpmで10分間遠心分離し、上清を酵素液とした。基質溶液として1.0mMp-ニトロフェニル-α-グルコピラノシド50mMリン酸ナトリウム酸緩衝液/100mMNaClpH7.0、反応停止液として0.3M炭酸ナトリウム溶液を用いた。検体液50μlに対して酵素液50μlを添加した。室温で10分間プレインキュベートしたあと、基質溶液を100μl添加した。120分間反応させ、反応停止液を100μl添加した。酵素反応前に予め反応停止液を添加した物をブランクとし、マイクロプレートリーダーバイオラッド社製:Model550にて被検溶液の405nmにおける吸光度を測定した。以上の方法から得られた菌株を再度同様の方法で確認試験を行い再現性の得られた菌株について候補株とした。候補株のうち豆チから得られた菌株の16sRNA遺伝子の塩基配列を決定したところ、配列表の配列番号2となった。この株はBacillussubtilisに分類されると結論づけ、この株をバチルスサブティリスB4BacillussubtilisB4株と命名した。そして本菌株を用いて液体培養を行った。次に500ml容積の坂口フラスコにて、50mlの4大豆ペプトンDIFCOSelectSoytone:BectonDickinsonandCompanyと2の炭素源とした培地で候補株を7日間培養した。培養液を1日目、3日目、7日目で適量採取し、13000rpm、10分間遠心分離後、上清を凍結乾燥し、試料とした。試料に凍結乾燥前の上清と等量のエタノール:蒸留水1:1、VV溶液を加え、を45μmポアサイズのPTFEメンブランで濾過し、そのうち10μlに濾液にアセトニトリル:蒸留水:蟻酸5049901、VVVを990μl加えた物を測定試料溶液とした。1-デオキシノジリマイシンの定量およびアザ糖の検出は、HILICタンデム質量分析法HILICMSMS法で行った。HPLCは、島津製作所社製ポンプ:LC20AD、カラム恒温槽:CTO20A、オートサンプラー:SIL20ACを使用した。カラムは東ソー社製TSKgelAmide-802.0×100mmを用い、カラム温度40°C、移動相はアセトニトリル0.1蟻酸を含むと水0.1蟻酸を含む、流速0.2mL/minのグラジエント展開で溶出した。質量分析計はエービーサイエックス社製API3200を使用した。桑葉1-デオキシノジリマイシン量は、1-デオキシノジリマイシン標品を用いた検量線から算出した。その結果、表1中に示す1-デオキシノジリマイシンの含有が培養上清中に確認された。また図1にクロマトグラムの例を示す。以上のことよりバチルスサブティリスB4BacillussubtilisB4株がデオキシノジリマイシンを含むアザ糖の生産能を有すると結論づけ独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センターに寄託した寄託番号:FERMAP-22050。日本全国より収拾された稲藁および、韓国国内の量販店で手に入れた清国醤を滅菌生理食塩水に懸濁した。懸濁液を培地1枚あたり100μl採取し、標準寒天培地上に塗沫、37°Cにて24時間培養した。培養後、形成されたいくつかの集落より釣菌し取得菌株とした。それぞれ、5mlの2大豆ペプトンにて37°Cにて3日間振盪培養した。培養液を13000rpm、5分間遠心分離し、上清を採取し、試料とした。培養上清を試料としてα-グルコシダーゼ阻害活性評価を行った。α-グルコシダーゼ阻害活性評価の方法は実施例1と同様である。得られた候補株をLB液体培地で培養し、得られた培養液を滅菌水で1,000倍に希釈したものを種菌液とした。大豆発酵食品は納豆と同様の工程で試作を行った。次に大豆発酵食品の試作方法を示す。丸大豆をよく洗い、大豆重量の3倍量の水に一晩浸漬した。吸水した大豆の水を切り、121°Cで50分間オートクレーブして煮豆とした。この煮豆がさめてから種菌液を50gあたり1mlの割合で接種し、40°Cで17時間発酵させた。その後4°Cで3日間保存して熟成を行い、大豆発酵食品とした。得られた大豆発酵物を凍結乾燥し試料とした。得られた試料を粉末化し、当該粉末50mgにエタノール:蒸留水1:1、VV1mLを加え、超音波洗浄機で10分間抽出を行い、3000rpmで遠心し、上清を0.45μmポアサイズのRCメンブレンフィルターで濾過し、濾液を測定試料溶液として、実施例1と同様に1-デオキシノジリマイシン含量を測定した。1-デオキシノジリマイシンの定量およびアザ糖の検出は、実施例1同様HILICタンデム質量分析法で行った。その結果、表2中に示す、1-デオキシノジリマイシンの含有が大豆発酵物中に確認された。また図2にクロマトグラムの例を示す。これら候補株より、1-デオキシノジリマイシンの生産量が一番高かったAS385株候の16sRNA遺伝子の塩基配列を決定したところ、配列表の配列番号1となった。この株はBacillusamyloliquefaciensに分類されると結論づけ、この株をバチルスアミロリクエファシエンスAS385BacillusamyloliquefaciensAS385株と命名し、デオキシノジリマイシンを含むアザ糖の生産能を有すると結論づけ独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センターに寄託した寄託番号:FERMAP-22049。"