"明細書中に記載の発明。本発明者らは、感染の間に病原性生物体によって発現される抗原性ポリペプチドを同定するこの技術を開発してきた。感染中に産生される自己抗血清を用いて、ゲノムDNAから作製した発現ライブラリーをスクリーニングして抗原を同定およびクローニングする。その最も広い局面において、本発明は、病原微生物による感染の間に発現される抗原性ポリペプチドの同定に関する。本発明の第1の局面に従って、抗原性ポリペプチドを同定する方法が提供され、この方法は、以下:i病原性生物体の遺伝子配列または部分的な遺伝子配列をコードする核酸ライブラリーを提供する工程;ii宿主細胞中にこのライブラリーを形質転換/トランスフェクトする工程;iiiこの形質転換/トランスフェクトした遺伝子配列または部分的な遺伝子配列の発現に役立つ条件を提供する工程;ivこの遺伝子配列/部分的な遺伝子配列によって発現されるポリペプチドと、この病原性生物体に感染されるかまたは感染された動物由来の自己抗血清とを接触させる工程;およびvこの自己抗血清に結合しているポリペプチドまたは部分的なポリペプチドをコードする核酸を精製する工程、を包含する。本発明の好ましい方法において、このライブラリーは、病原性生物体のゲノムDNAを含む。理想的には、この病原性生物体は、細菌である。より好ましくは、なおこの細菌性生物体は、以下から選択される:Staphylococcusaureus;Staphylococcusepidermidis;Enterococcusfaecalis;Mycobacteriumtuberculsis;StreptococcusgroupB;Streptoccocuspneumoniae;Helicobacterpylori;Neisseriagonorrhea;StreptococcusgroupA;Borreliaburgdorferi;Coccidiodesimmitis;Histoplasmasapsulatum;NeisseriameningitidistypeB;Shigellaflexneri;Escherichiacoli;Haemophilusinfluenzae。好ましくは、なおこの病原性生物体は、Staphylococcusspp.属である。理想的には、この生物体は、StaphylococcusaureusまたはStaphylococcusepidermidisである。本発明のさらに好ましい実施形態において、この核酸ライブラリーは、λライブラリーであり、理想的にはλ発現ライブラリーである。本発明の第2の局面に従って、以下から選択されるDNA配列を含む核酸分子が提供される:i配列番号1~13に示されるDNA配列;ii病原性生物体によって発現されるポリペプチドをコードする上記iにおいて同定される配列番号1~13に示される配列にハイブリダイズするDNA配列;およびiiiiおよびiiにおいて規定されるDNA配列に対して遺伝コードの結果として縮重するDNA配列。本発明のなおまださらに好ましい実施形態において、この核酸分子は、ゲノムDNAである。本発明の好ましい実施形態において、ストリンジェントなハイブリダイゼーション条件下で配列番号1~13に示される配列にアニーリングする単離された核酸分子が提供される。ストリンジェントなハイブリダイゼーション/洗浄条件は、当該分野において周知である。例えば、核酸は、60°Cにて0.1×SSC、0.1SDS中で洗浄後、安定にハイブリダイズする。核酸の配列が知られている場合、最適なハイブリダイゼーション条件は、算出され得ることが当該分野において周知である。例えば、ハイブリダイゼーション条件は、ハイブリダイゼーションに共される核酸のGC含有量によって決定され得る。Sambrookら1989MolecularCloning;ALaboratoryApproachを御参照のこと。特定の相同性のある核酸分子間でハイブリダイゼーションを達成するのに必要とされるストリンジェンシー条件を算出するための一般式は、以下:Tm=81.5°C16.6Log[Na]0.41[GC]-0.63ホルムアミドである。本発明の第3の局面に従って、本発明に従う方法によって同定される少なくとも1つのポリペプチドが提供される。本発明の好ましい実施形態において、このポリペプチドは、本発明の先の任意の局面または実施形態に従う生物体の感染性病原性に関連する。さらになお好ましくは、このポリペプチドは、配列番号14~19の少なくとも1つ、または配列番号14~19の一部である。本発明の第4の局面に従って、核酸分子がこの核酸分子によってコードされるポリペプチドの組換え発現を促進するよう適合するベクターの一部であることを特徴とする核酸分子が提供される。本発明の好ましい実施形態において、このベクターは原核生物の遺伝子発現のために適合する発現ベクターである。あるいは、この発現ベクターは、真核生物の遺伝子発現のために適合される。代表的には、この適合は、限定する目的ではなく例示として、細胞特異的発現を媒介する転写制御配列プロモーター配列の供給を含む。これらのプロモーター配列は、細胞特異的、誘導性または構成的であり得る。プロモーターは、当該分野で認識されている用語であり、明瞭さのために、限定する目的ではなく例示としてのみ提供される以下の特徴を含む。エンハンサーエレメントは、遺伝子の転写開始部位に対して5’方向にしばしば見出されるシス作用性核酸配列であるエンハンサーはまた、遺伝子配列に対して3’方向に見出され得るかまたはイントロン配列に位置され得、従って独立した位置である。エンハンサーは、エンハンサーが連結される遺伝子の転写速度を増加させるよう機能する。エンハンサー活性は、エンハンサーエレメントに特異的に結合することが示されてきたトランス作用性転写因子ポリペプチドに応答性である。転写因子の結合/活性DavidSLatchmanによる、EukaryoticTranscriptionFactors,AcademicPressLtd,SanDiegoを御参照のことは、多数の環境の信号environmentalcueに応答性であり、これらの信号は、限定する目的ではなく例示として、中間代謝産物例えば、グルコース、脂質、環境のエフェクター例えば、光、熱を含む。プロモーターエレメントはまた、いわゆるTATAボックスおよび転写開始の部位を選択するよう機能するRNAポリメラーゼ開始選択RIS配列を含む。これらの配列はまた、とりわけRNAポリメラーゼによる転写開始選択を促進させるよう機能するポリペプチドと結合する。適合はまた、この選択マーカーおよび自己複製配列の供給を含み、これらは両方とも真核生物細胞または原核生物宿主のいずれかにおけるこのベクターの維持を促進する。自発的に維持されるベクターは、エピソームのベクターと呼ばれる。ベクターにコードされる遺伝子vectorencodedgeneの発現を促進する適合は、転写終結配列/ポリアデニル化配列の提供を含む。これはまた、二シストロン性発現カセットまたは多重シストロン性発現カセットに配置されるベクターにコードされる遺伝子の発現を最大にするよう機能するリボソーム内部侵入領域IRESの提供を含む。これらの適合は、当該分野において周知である。一般的に、発現ベクター構築および組換えDNA技術に関する顕著な量の刊行された文献が存在する。Sambrookら1989MolecularCloning:ALaboratoryManual,ColdSpringHarbourLaboratory,ColdSpringHarbour,NYおよびこの文献中の参考文献;Marston,F1987DNACloningTechniques:APracticalApproach第III巻IRLPress,OxfordUK;DNACloning:FMAusubelら,CurrentProtocolsinMolecularBiology,JohnWileySons,Inc.1994を御参照のこと。本発明のなおさらなる局面に従って、本発明の先の任意の局面または実施形態に従うポリペプチドの産生のための方法が提供され、この方法は、以下:i本発明に従うベクターで形質転換/トランスフェクトした細胞を提供する工程;iiこのポリペプチドの製造に役立つ条件下でこの細胞を増殖させる工程;およびiiiこの細胞、またはこの細胞の増殖環境由来のこのポリペプチドを精製する工程、を包含する。本発明の好ましい方法において、このベクターは、このポリペプチドの精製を促進する分泌シグナルをコードし、それ故、この組換えポリペプチドは、このポリペプチドの精製を促進する分泌シグナルと共に提供される。本発明の第5の局面に従って、本発明に従うベクターで形質転換またはトランスフェクトした細胞または細胞株が提供される。本発明の好ましい実施形態において、この細胞は、原核生物細胞である。あるいは、この細胞は、以下から選択される真核生物細胞である:真菌;昆虫;両生類;哺乳動物;植物。本発明のなおさらなる局面に従って、本発明に従う少なくとも1つのポリペプチドを含むワクチンが提供される。理想的には、このワクチンは、キャリアおよび/またはアジュバントをさらに含む。本発明はまた、以下の項目を提供する。項目1i配列番号1~13に示されるDNA配列;ii上記iにおいて同定された配列番号1~13に示される配列にハイブリダイズし、そして病原性生物体によって発現されるポリペプチドをコードするDNA配列;iiiiおよびiiにおいて規定されるDNA配列に対して遺伝コードの結果として縮重するDNA配列、からなる群より選択されるDNA配列を含む、単離された核酸分子。項目2ゲノムDNAである、項目1に記載の単離された核酸分子。項目3ストリンジェントなハイブリダイゼーション条件下で、配列番号1~13に示される配列にアニーリングする、項目1または2に記載の単離された核酸分子。項目4項目1~3のいずれか1項に記載の核酸分子を含む、ベクター。項目5上記核酸によってコードされるポリペプチドの組み換え発現に適合している、項目4に記載のベクター。項目6原核生物遺伝子発現に適合した発現ベクターである、項目4または5に記載のベクター。項目7真核生物遺伝子発現に適合した発現ベクターである、項目4または5に記載のベクター。項目8上記ベクターの適合が、プロモーター配列の供給を含む、項目4~7のいずれか1項に記載のベクター。項目9上記プロモーター配列が、細胞特異的、誘導性または構成的発現を提供する、項目8に記載のベクター。項目10抗原性ポリペプチドを同定するための方法であって、該方法は、以下:i病原性生物体の遺伝子または部分的な遺伝子配列をコードする核酸ライブラリーを提供する工程;ii宿主細胞中に該ライブラリーを形質転換/トランスフェクトする工程;iii該遺伝子/部分的な遺伝子配列によって発現されるポリペプチドと、該病原性生物体に感染されるかまたは感染された動物由来の自己抗血清とを接触させる工程;およびiv該自己抗血清に結合しているポリペプチドまたは部分的なポリペプチドをコードする核酸を精製する工程、を包含する、方法。項目11項目10に記載の方法であって、ここで、上記ライブラリーが、病原性生物体のゲノムDNAを含む、方法。項目12項目10または項目11に記載の方法であって、ここで、上記病原性生物体が細菌である、方法。項目13項目10~12のいずれか1項に記載の方法であって、ここで、上記細菌性生物体が、以下:Staphylococcusaureus;Staphylococcusepidermidis;Enterococcusfaecalis;Mycobacteriumtuberculsis;StreptococcusgroupB;Streptoccocuspneumoniae;Helicobacterpylori;Neisseriagonorrhea;StreptococcusgroupA;Borreliaburgdorferi;Coccidiodesimmitis;Histoplasmasapsulatum;NeisseriameningitidistypeB;Shigellaflexneri;Escherichiacoli;Haemophilusinfluenzae、から選択される、方法。項目14項目13に記載の方法であって、ここで、上記病原性生物体が、Staphylococcusaureusである、方法。項目15項目13に記載の方法であって、上記病原性生物体が、Staphylococcusepidermidisである、方法。項目16項目10~15のいずれか1項に記載の方法であって、ここで、上記核酸ライブラリーが、λライブラリーである、方法。項目17項目10~16のいずれか1項に記載の方法によって同定されるポリペプチド。項目18配列番号14~19からなる群より選択される、項目17に記載のポリペプチド。項目19項目17または18に記載のポリペプチドの産生のための方法であって、該方法は、以下:i項目4~9のいずれか1項に記載のベクターを用いて形質転換またはトランスフェクトした細胞を提供し、該細胞に細胞培養条件を提供する工程;ii該細胞、またはその増殖環境から、該ポリペプチドを精製する工程、を包含する、方法。項目20上記ベクターは、上記ポリペプチドの精製を促進する分泌シグナルをコードし、それ故、上記組換えポリペプチドは、該ポリペプチドの精製を促進する分泌シグナルと共に提供される、項目19に記載の方法。項目21項目4~9のいずれか1項に記載のベクターで形質転換またはトランスフェクトした、細胞。項目22原核細胞である、項目21に記載の細胞。項目23真菌細胞、昆虫細胞、両生類細胞、哺乳動物細胞、植物細胞からなる群より選択される真核細胞である、項目21に記載の細胞。項目24項目16または17に記載のポリペプチドを少なくとも1つ含む、ワクチン項目25項目24に記載のワクチンであって、該ワクチンがさらにキャリアおよび/またはアジュバントを含む、ワクチン。項目26病原性微生物に対して動物を免疫する方法であって、該方法は、上記項目のいずれか1項に記載のポリペプチドの少なくとも1つ、もしくはその一部、または上記項目のいずれか1項に記載のワクチン、を該動物に投与する工程、を包含する、方法。項目27項目26に記載の方法であって、上記動物がヒトである、方法。項目28項目26または項目27に記載の方法であって、ここで、上記抗原性ポリペプチドまたはワクチンが、静脈内、筋肉内または皮下のいずれかへの直接注射によって送達される、方法。項目29項目25または項目26に記載の方法であって、ここで、上記抗原性ポリペプチドまたはワクチンが経口投与される、方法。項目30項目26~29のいずれか1項に記載の方法であって、ここで、上記ワクチンが、細菌Staphylococcusspp.属に対するものである、方法。項目31項目30に記載の方法であって、ここで、上記ワクチンが、細菌種Staphylococcusaureusに対するものである、方法。項目32項目30に記載の方法であって、ここで、上記ワクチンが、細菌種Staphylococcusepidermidisに対するものである、方法。項目33項目16または項目17に記載のポリペプチドの選択的部分と少なくとも結合する、抗体、または少なくともその有効な部分。項目34モノクローナル抗体である、項目33に記載の抗体。項目35項目33または項目34に記載の抗体であって、ここで、上記有効な部分がFAbフラグメントを含む、抗体。項目36キメラ抗体である、項目33~35のいずれか1項に記載の抗体。項目37ヒト化抗体である、項目33~35のいずれか1項に記載の抗体。項目38項目33~37のいずれか1項に記載の抗体であって、該抗体に、マーカー、標識、またはタグが提供される、抗体。項目39項目38に記載の抗体であって、ここで、該抗体に、放射活性標識、蛍光標識;エピトープタグからなる群より選択されるマーカーが提供される、抗体。項目40融合ポリペプチドとして産生される、項目34~39のいずれか1項に記載の抗体。項目41項目34~40のいずれか1項に記載の抗体の発現のために適合する、ベクター。項目42項目41に記載のベクターを用いて形質転換またはトランスフェクトした細胞。項目43項目34または40のいずれか1項に記載の抗体の産生のための方法であって、該方法は、i項目41に記載のベクターを用いて形質転換またはトランスフェクトした細胞を提供し、該細胞に細胞培養条件を提供する工程;およびii該細胞、またはその増殖環境から、該ポリペプチドを精製する工程、を包含する、方法。項目44項目34に記載の抗体を産生する、ハイブリドーマ細胞株。項目45Staphylococcusaureus関連敗血症、食中毒または皮膚障害の処置のための医薬品の製造のための、項目33~40のいずれか1項に記載の抗体の使用。項目46Staphylococcusepidermidis関連敗血症、腹膜炎または心内膜炎の処置のための医薬品の製造のための、項目33~40のいずれか1項に記載の抗体の使用。項目47項目34に記載のモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマ細胞株を調製するための方法であって、i免疫応答性哺乳動物を、配列番号14~19に示されるアミノ酸配列を有する少なくとも1つのポリペプチドまたはそのフラグメントを含む免疫原を用いて免疫する工程;ii該免疫された免疫応答性哺乳動物のリンパ球を骨髄腫細胞と融合してハイブリドーマ細胞を形成する工程;iiiiのアミノ酸配列に対する結合活性について、工程iiの上記ハイブリドーマ細胞によって産生されたモノクローナル抗体をスクリーニングする工程;iv該ハイブリドーマ細胞を培養して増殖させ、そして/またはこのモノクローナル抗体を分泌させる工程;およびv培養上清から該モノクローナル抗体を回収する工程、を包含する、方法。項目48上記免疫応答性哺乳動物はマウスである、項目47に記載の方法。項目49上記免疫応答性哺乳動物はラットである、項目47に記載の方法。用語アジュバントおよび用語キャリアは、以下の様式に解釈される。いくつかのポリペプチド抗原またはペプチド抗原は、B細胞エピトープを含むがT細胞エピトープは含まない。免疫応答は、このポリペプチド/ペプチド中にT細胞エピトープを含ませることによってか、または複数のT細胞エピトープを含む免疫原性キャリアタンパク質例えば、キーホールリンペットヘモシアニンもしくは破傷風トキソイドへのこのポリペプチド/ペプチドの結合体化によって非常に増強され得る。この結合体は、抗原提示細胞によって取り込まれ、プロセスされ、そしてヒト白血球抗原HLAのクラスII分子によって提示される。これは、キャリアに由来するエピトープに対するT細胞の特異性によって、もとの抗原性ポリペプチド/ペプチドに特異的なB細胞に対してT細胞補助Tcellhelpが与えられることを可能にする。これは、抗体の産生、分泌およびアイソタイプスイッチの増加を引き起こし得る。アジュバントは、免疫細胞の活性を調節することによって抗原に対する特異的な免疫応答を増強する物質または手段である。アジュバントの例としては、単なる例として、同時刺激分子に対するアゴニスト性抗体、フロイントアジュバント、ムラミルジペプチド、リポソームが挙げられる。従って、アジュバントは、免疫調節物質である。キャリアは、第2の分子に結合した場合、第2の分子に対する免疫応答を増強する免疫原性分子である。本発明のなおさらなる局面において、病原性微生物に対して動物を免疫する方法が提供され、この方法は、本発明に従う少なくとも1つのポリペプチドもしくはその一部または本発明に従うワクチンをこの動物に投与する工程を包含する。本発明の好ましい方法において、この動物はヒトである。好ましくは、このワクチンまたは抗原性ポリペプチドは、静脈内、筋肉内、皮下のいずれかの直接注射によって送達され得る。さらになお、このワクチンまたは抗原性ポリペプチドは、経口摂取され得る。好ましくは、このワクチンは、細菌種Staphylococcusaureusに対するものである。このワクチンはまた、細菌種Staphylococcusepidermidisに対するものであり得る。ワクチンまたは抗原性ポリペプチドが、ヒト以外の動物限定する目的ではなく例示として、家庭用ペット、家畜、ウマにおいて予防する状況または緩和する状況において有効であることもまた、明白である。本発明のさらなる局面に従って、本発明に従う少なくとも1つのポリペプチドに結合する抗体、または少なくとも有効に結合するその一部が提供される。本発明の好ましい実施形態において、この抗体は、ポリクローナル抗体またはモノクローナル抗体であり、ここで、この抗体はこのポリペプチドに特異的である。あるいは、この抗体は、ヒト抗体の不変領域または定常領域と共にこの抗体の可変領域を含むよう組換え方法によって産生されたキメラ抗体である。本発明のさらなる代替実施形態において、この抗体は、この抗体の相補性決定領域を、ヒト抗体の定常C領域および可変V領域由来のフレームワーク領域の両方と結合させる組換え方法によってヒト化される。好ましくは、この抗体は、従来の標識またはタグ例えば、放射活性および/もしくは蛍光および/もしくはエピトープの標識もしくはタグを含むマーカーと共に提供される。好ましくは、このポリペプチドに対するこのヒト化モノクローナル抗体は、原核生物細胞または真核生物細胞のトランスフェクションまたは形質転換に適切に適合する発現ベクターにおいて融合ポリペプチドとして産生される。抗体免疫グロブリンとしてもまた公知は、外来分子抗原に対する特異性を有するタンパク質分子である。免疫グロブリンIgは、二対のポリペプチド鎖、一対の軽L低分子量鎖κまたはλ、ならびに一対の重H鎖γ、α、μ、δおよびεからなる、構造的に関連したタンパク質のクラスである4つ全てが、ジスルフィド結合によって互いに連結されている。H鎖およびL鎖は両方とも、抗原の結合に寄与し、かつ1つのIg分子から別のIg分子までにわたり高度に可変性である領域を有する。さらに、H鎖およびL鎖は、非可変領域または定常領域を含む。L鎖は、2つのドメインからなる。このカルボキシ末端のドメインは、所定の型のL鎖の間で本質的に同一であり、そして定常C領域と称される。このアミノ末端のドメインは、L鎖毎に変化し、この抗体の結合部位に寄与する。この可変性に起因して、これは可変V領域と称される。Ig分子のH鎖は、いくつかのクラスα、μ、σ、αおよびγのものであるこれらの中に、サブクラスが存在する。2つの同一のH鎖およびL鎖の1つ以上のユニットからなるアセンブルされたIg分子は、それが保有するH鎖からその名前が由来する。従って、以下の5つのIgアイソタイプが存在する:IgA、IgM、IgD、IgEおよびIgGH鎖における差異に基づく4つのサブクラスすなわち、IgG1、IgG2、IgG3およびIgG4を有する。抗体構造およびそれらの種々の機能に関するさらなる詳細は、以下において見出され得る:UsingAntibodies:Alaboratorymanual,ColdSpringHarbourLaboratoryPress。キメラ抗体は、マウス抗体またはラット抗体のV領域の全てがヒト抗体C領域と結合される組換え抗体である。ヒト化抗体は、げっ歯類抗体V領域由来の相補性決定領域とヒト抗体V領域由来のフレームワーク領域とを融合する組換えハイブリッド抗体である。ヒト抗体由来のC領域もまた用いられる。相補性決定領域CDRは、抗体の重鎖および軽鎖の両方のN末端ドメイン内にある領域であり、ここにV領域の大部分のバリエーションが制限される。これらの領域は、その抗体分子の表面でループを形成する。これらのループは、抗体と抗原との間の結合表面を提供する。非ヒト動物由来の抗体は、外来抗体に対する免疫応答および循環からのその抗体の除去を誘発する。キメラ抗体およびヒト化抗体は両方とも、ヒト被験体へ注射した場合、抗原性を低減させる。なぜなら、減少した量のげっ歯類すなわち、外来抗体が組換えハイブリッド抗体内に存在する上、ヒト抗体領域は免疫応答を誘発illicitしないからである。これは、より弱い免疫応答および抗体のクリアランスにおける減少を生じる。これは、ヒト疾患の処置において治療用抗体を用いる場合、明らかに望ましい。ヒト化抗体は、より少ない外来性抗体の領域を有するよう設計され、従って、キメラ抗体よりもより低い免疫原性であると考えられる。本発明の別の局面において、本発明に従うヒト化抗体またはキメラ抗体の発現に適合するベクターが提供される。本発明のなおさらなる局面において、本発明に従うヒト化抗体またはキメラ抗体をコードするベクターで形質転換またはトランスフェクトされた細胞または細胞株が提供される。本発明のなおさらなる局面において、本発明に従うヒト化抗体またはキメラ抗体の産生のための方法が提供され、この方法は、以下:i本発明に従うヒト化抗体またはキメラ抗体をコードする核酸分子を含むベクターで形質転換またはトランスフェクトした細胞を提供する工程;iiこの抗体の製造に役立つ条件下でこの細胞を増殖させる工程;およびiiiこの細胞、またはその増殖環境からこの抗体を精製する工程、を包含する。本発明のなおさらなる局面において、本明細書中の前記のようなモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマ細胞株が提供される。本発明のさらなる局面において、本発明に従うハイブリドーマ細胞株を用いて本発明に従うモノクローナル抗体を産生させる方法が提供される。本発明のさらなる局面において、本発明に従うモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマ細胞株を調製する方法が提供され、この方法は、以下の工程:i免疫応答性哺乳動物を、配列番号14~19に示されるアミノ酸配列を有する少なくとも1つのポリペプチドまたはそのフラグメントを含む免疫原を用いて免疫する工程;ii免疫された免疫応答性哺乳動物のリンパ球を骨髄腫細胞と融合してハイブリドーマ細胞を形成する工程;iiiiのアミノ酸配列に対する結合活性について、工程iiのハイブリドーマ細胞によって産生されたモノクローナル抗体をスクリーニングする工程;ivこのハイブリドーマ細胞を培養して増殖させ、そして/またはこのモノクローナル抗体を分泌させる工程;およびvこの培養上清からモノクローナル抗体を回収する工程、を包含する。好ましくは、この免疫応答性哺乳動物は、マウスである。あるいは、この免疫応答性哺乳動物は、ラットである。ハイブリドーマ細胞を用いたモノクローナル抗体の産生は、当該分野において周知である。モノクローナル抗体を産生するために用いられるこれらの方法は、KohlerおよびMilstein,Nature256,495-4971975ならびにまた、DonillardおよびHoffman,BasicFactsaboutHybridomas,CompendiumofImmunology第VII版,Schwartz,1981に開示され、これらは参考として援用される。本発明のさらなる局面において、Staphylococcusaureus関連敗血症、食中毒または皮膚障害の処置のための医薬の製造のための、抗体の使用が提供される。本発明の別の局面において、Staphylococcusepidermidis関連敗血症、腹膜炎または心内膜炎の処置のための医薬の製造のための、本発明に従う抗体の使用が提供される。本発明に従う方法によって同定されたポリペプチドは、以下から生じる広範な疾患に対する治療用抗体の産生を容易にすることが明らかである:病原性感染例えば、敗血症;結核;細菌関連食中毒;血液感染;腹膜炎;心内膜炎;セプシス;髄膜炎;肺炎;胃潰瘍;淋病;連鎖球菌性咽喉炎strepthroat;連鎖球菌関連中毒性ショック;壊死性筋膜炎;膿痂疹;ヒストプラスマ症;ライム病;胃腸炎;赤痢;細菌性赤痢。既に前で述べたように、微生物は、多種多様な疾患を引き起こす。限定する目的でなく、以下の列挙は、多数の微生物およびこれらが引き起こすいくつかの疾患である。本発明の実施形態を、ここで、単なる実施例によってならびに以下の材料、方法および配列番号1~19ならびに表1を参照して記載する。材料および方法S.aureus8325/4のゲノムDNAのλZAP発現ライブラリーを用いた。これは、全ゲノムDNAの部分的なSau3A消化由来の2~10kbのフラグメントを含む。これを、ベクターのBamH1部位中にクローニングした。このライブラリーは、このゲノムの10倍より高いの達成範囲を含む。このライブラリーを直径9cmのペートリー皿上におよそ20,000プラーク形成単位の初期スクリーニングを用いたプラークリフトplaqueliftによって探索した。用いたプレーティング細胞、それらの処理、プレーティング手順および緩衝液は、製造業者のハンドブックStratageneに全く記載されるように行った。プレーティング細胞EscherichiacoliXL1-BlueMRF’を、ファージで感染させ、そしてLBプレート10mMのMgSO4を含む上に、3mlのLBトップアガー10mMのMgSO4を含むをプレーティングした。次いで、これらのプレートを、42°Cにて4時間、インキュベートした。直径8.5cmのニトロセルロースフィルターディスク予め10mMのIPTGで濡らし、そして風乾したを、各プレートに配置し、その位置をマークした。次いで、このプレートを37°Cでさらに3.5時間インキュベートした。これらのフィルターを回収し、TBST緩衝液で洗浄し、次いで、6w/vの乾燥脱脂粉乳および3v/vのブタ血清Sigmaを含有するTBST中で4°Cにて一晩ブロッキングした。この血清を用いて、フィルター上の任意のプロテインAクローンをブロックした。次いで、これらのフィルターを、室温にて90分間、ブロッキング溶液において患者の血清1/5000希釈で処理した。抗血清を、主要なS.aureus感染から回復に向かっている患者から得た。次いで、これらのフィルターを、3回、TBST中で10分間洗浄した。用いた二次抗体は、室温にて30分間、ブロッキング溶液での1/30,000希釈のヤギ抗ヒト全IgGアルカリホスファターゼ結合物Sigmaであった。次いで、これらのフィルターを上記のように洗浄し、標準的な比色手順を用いて発色させた。交差反応性プラークをアガープレート上に配置し、そして0.02mlのクロロホルムを含む0.2mlのファージ緩衝液中に芯をくり抜いて入れたcore。各コアストックの力価を決定し、そしてファージを1プレートあたりおよそ200プラークでプレーティングした。プラークリフトおよびスクリーニングを上記のように実施して、単一で純粋な交差反応性クローンを得た。次いで、この純粋なクローンをプレートにスポット1μlし、直径0.5cmのコンフルエントなプラークを得た。30の個々のクローンを、各プレートにスポットし得る。プラークリフトを実施し、このフィルターを適切な血清で探索した。この方法において、クローンを他の患者の血清、非感染ドナーの血清および抗プロテインA血清とのこれらの交差反応性について試験し得る。次いで、個々のクローンを切り出して、製造業者のプロトコルStratageneを用いてE.coliXLOLRにファージミドを与えた。プラスミドミニプレップを各々実施し、ゲノムのインサートのサイズを制限マッピングによって決定した。このクローニングしたインサートの正体を、ベクター配列に対するプライマーこれは、このインサートにわたる配列決定を可能にするを用いてDNA配列決定によって決定した。誘導された配列の公的ドメインデータベースに対する比較によって、クローニングした遺伝子の性質を決定し得る。ハイブリダイゼーション溶液/条件代表的に、ハイブリダイゼーション条件は、以下を用いる:4~6×SSPE20×SSPEは、1lに溶解させた175.3gのNaCl、88.2gのNaH2PO4H2Oおよび7.4gのEDTAを含有し、そしてpHを7.4に調整した;5~10×デンハルト液50×デンハルト液は、5gのFicollタイプ400,Pharmacia、5gのポリビニルピロリドンおよびabd5gのウシ血清アルブミン;l00μg~1.0mg/mlの超音波処理したサケ/ニシンDNA;0.1~1.0のドデシル硫酸ナトリウム;必要に応じて40~60の脱イオン化ホルムアミドを含む。ハイブリダイゼーション温度は、核酸標的配列のGC含有量に依存して変化させるが、代表的には、42°C~65°Cである。配列表"