"複数の層を含む膜構造であって、-前記層の少なくとも1つがポリマーナノファイバーから製造されたナノウェブであり、-前記ナノウェブの平均流量細孔径が50nm~5μmの範囲であり、-前記ナノファイバーの数平均直径が100~600nmの範囲であり、-前記ナノウェブの目付が1~20g/m2の範囲であり、-前記ナノウェブの空隙率が60~95の範囲であり、-前記層の少なくとも1つが支持層であり、-前記ナノウェブが親水性である、膜構造。前記ナノファイバーが脂肪族ポリアミド、その混合物およびコポリアミド、好ましくはポリアミド-6、ポリアミド-6,6、ポリアミド-4,6、これらのコポリアミドおよび/または混合物から製造される、請求項1に記載の膜構造。前記支持材が親水性である、請求項1または2に記載の膜構造。前記ナノファイバーがコーティングされており、好ましくは防汚コーティングでコーティングされている、請求項1~3のいずれか1項に記載の膜構造。前記防汚コーティングが生物防汚コーティングである、請求項1~4のいずれか1項に記載の膜構造。前記支持層が微孔質層である、請求項1~5のいずれか1項に記載の膜構造。前記微孔質層が超高分子量ポリエチレンから製造され、好ましくは防汚コーティングされた超高分子量ポリエチレンから製造されている、請求項6に記載の膜構造。前記膜構造の層の少なくとも1つがコーティングされている、請求項1~7のいずれか1項に記載の膜構造。前記膜構造の層の少なくとも1つが生物防汚コーティングでコーティングされている、請求項8に記載の膜構造。前記支持層が前記膜構造の上側にあり、前記ナノウェブが前記構造の下側にある、請求項1~9のいずれか1項に記載の膜構造。請求項1~10のいずれか1項に記載の膜構造を備える膜カセット。請求項1~10のいずれか1項に記載の膜構造または請求項11に記載の膜カセットを備えるデバイス。血液濾過のための、請求項1~10のいずれか1項に記載の膜構造、請求項11に記載の膜カセット、または請求項12に記載のデバイスの使用。次の用途:ガス-ガス濾過、高温ガス濾過、粒子濾過、液体濾過精密濾過、限外濾過、ナノ濾過、逆浸透などのような分子分離および濾過;排水浄化、油および燃料濾過;医薬成分および機能性食品成分を含む放出制御用途;浸透抽出、浸透気化および接触器用途;酵素の固定化、および加湿器、薬物送達;産業用ワイプ、手術用ガウンおよびドレープ、創傷ドレッシング、組織工学、保護衣、触媒担体、および様々なコーティングのいずれか1つのための、請求項1~10のいずれか1項に記載の膜構造、請求項11に記載の膜カセット、または請求項12に記載のデバイスの使用。診断デバイスにおける、請求項1~10のいずれか1項に記載の膜構造、請求項11に記載の膜カセット、または請求項12に記載のデバイスの使用。[実施例]標準的な重合方法により製造されたポリアミド-4,6からナノウェブを製造した。ナノウェブは、ギ酸と酢酸の混合物に溶解したポリアミド-4,6の溶液を使用し、本明細書に記載のエレクトロスピニングを使用して製造した。混合物は、ギ酸40wtと酢酸60wtとからなった。ギ酸は、メルクMerckから入手したProanalyse、98~100。酢酸もメルクから入手した99。ナノウェブを紡糸した支持体は、Novatexx2597であった。Novatexx2597は、FreudenbergFiltrationTechnologiesKGから市販されている不織支持材である。これは、ポリアミド-6とポリアミド-6,6とのブレンドをベースにする支持材である。PA-4,6から製造したナノウェブと使用した支持体について、濡れ性を測定した。これらは全て、即時の濡れを示す。比較例Aについてもその親水性を試験した。フィルターの両側は親水性が異なり、細孔が大きい側の方が親水性が高いことが分かった。細孔が小さい側非光沢表面を有する側では、水滴はしばらくの間存在し、ゆっくりとしか広がり始めず、親水性が低いことを示した。[実験]本発明の膜構造の性能を試験するために、本膜構造および従来技術の血液分離フィルター比較を血液分離試験に使用した。血液分離試験では、健常被験者の鮮血20μlを膜構造の上面および比較フィルターの上面に付着させた。比較フィルターは、ポールコーポレーションPallCorporation製の市販のフィルターであった。フィルターは、PallVividGFフィルターとして販売されている。血液分離試験では、血液がどれくらい迅速に膜構造を通過するか血液垂直方向ウィッキングおよび血液がどれくらい迅速に膜構造の上面で広がるか血液横方向ウィッキングを調べた。さらに、膜構造または比較フィルターの上面で血液粒子が横方向でどれくらい遠くまで広がるかを調べ;また、これを目視検査でも調べた。結果は、僅かに赤味を帯びることがあり、これは血球が横方向に広がることを意味し、気味を帯びた場合、血球が横方向にはほとんど広がらないことを意味する。さらに、膜を通過した血漿が多くの血液粒子を含有したか否かも調べたが、これは分離性能を示す。この分離性能は目視検査で調べた。膜構造または比較フィルターを通過した血漿が清浄であった場合、それは、血漿が血球をほとんど含有しないことを意味した。さらに、実施例および比較例の幾つかについて、使用した材料の凝固活性化能力がどれくらいであるかを調べた。これは、トロンビンの生成により行った。フィルター材料円形、直径5mmの穿孔部分を、基礎接触活性化basalcontactactivationが低い3.2w/vクエン酸塩加低濃度血小板血漿PPPと共にインキュベートした。フィルターディスクを180μlのPPPと共に96穴プレートに入れ15~30分間、室温で振盪しながらインキュベートした。インキュベート直後、トロンビン生成のため、各サンプル80μlを2回、新しい96ウェルプレートに移した。フィルターディスクが存在しない場合または存在する場合のヒト低濃度血小板血漿中でのトロンビン生成をCAT法トロンビノスコープThrombinoscopeBVで測定したが、これは、トロンビンに対する低親和性蛍光基質Z-Gly-Gly-Arg-AMCを使用して、凝固血漿中のトロンビン活性を連続的にモニターする。測定は、80μlのヒト低濃度血小板正常プール血漿中で、全容量120μlで行った。80μlの血漿サンプルに、20μlのMP-試薬0pMTF、24μMリン脂質20:20:60molPS:PE:PCを添加した。このMP-試薬は、トロンビノスコープB.V.オランダから市販されている。370Cで10分間インキュベートした後、20μlのFluCa2.5mM蛍光基質、87mM塩化カルシウムを添加し、トロンビン生成の記録を開始した。内部フィルター効果および基質消費を補正するために、各トロンビン生成測定値は、一定量のトロンビン-a2-マクログロブリン複合体20μlのThrombinCalibrator、トロンビノスコープBVと20μlのFluCa2.5mM蛍光基質、100mM塩化カルシウムとを添加した、同じ血漿のサンプル80μlで得られた蛍光曲線に対して較正された。390/460フィルターセットを備えたフルオロスキャンアセントFluoroskanAscent読取装置ThermoLabsystemsOY、フィンランド、ヘルシンキで蛍光を読み取り、トロンビン生成曲線をトロンビノスコープソフトウェアトロンビノスコープBVで算出した。さらに、実施例および比較例の幾つかについて、使用した材料が血液中のタンパク質を吸着するかどうかを調べた。フィルター材料円形、直径5mmの穿孔部分を、75倍に希釈したNormalPoolPPP2011NP11と共にインキュベートした。標準血液サンプルNP11は当業者に公知の方法で得られたが、例えば、ThrombosisandHaemostasis,2008,1002Aug,pg362-364を参照されたいこの文献は参照により本明細書に援用される。振盪しながら、室温で60分間インキュベーションを行った。この後、インキュベートした血漿の全タンパク質含有量を評価した。界面活性剤で可溶化した後のタンパク質濃度の比色アッセイであるDC商標界面活性剤適合性プロテインアッセイBio-Radで全タンパク質を評価した。DCプロテインアッセイは、標準的な実験室用分光器またはマイクロプレートリーダーを用いて650~750nmで測定される。以下の表および図に結果を示す。[表の説明]表1に、膜構造本発明のものと比較例の両方に使用される材料の説明を記載し、表2に、膜構造の性質を記載し、表3に、血液分離試験の結果を記載する。比較例Aは、市販のPallVividGFフィルターであり、比較例Bは、不織支持材:Novatexx2597FreudenbergFiltrationTechnologiesKGから市販されているである。実施例1、2、3および4は全て、比較例BのNovatexx2597不織支持体上に電気紡糸されているPA-4,6ナノウェブ膜構造である。実施例1~4は、平均流量細孔径が異なる。更なる詳細については表1を参照されたい。サンプルをエタノールで洗浄し空気乾燥する前とその後に、サンプルを秤量することにより浸出物の量を測定した。[結果]表1の結果から、本発明の材料実施例1~4を使用すると、従来技術の材料比較例1より浸出物が減少することを明確に推論できる。さらに、表2から、本発明の膜構造のデッドボリュームは、従来技術の材料のものよりずっと少ないと結論付けることができる。表3から、本発明の膜構造では、血液分離時間がずっと短縮されると結論付けることができる。さらに、本発明の膜では、従来技術の材料と比較して、血液1μl当たり生成される血漿量が多くなる。本発明の膜構造を使用すると図3、従来技術のフィルターを使用する場合図2と比較して、凝固活性化能力が低下することを明確に認めることができる。図1は、参照の目的で援用されるに過ぎず、分析中にフィルターを使用しない場合の測定結果を示す。膜構造上に吸収されたタンパク質の量を測定する試験で、本発明の膜構造が吸収する血液タンパク質の量は、検出限界以下であることが分かった。"