糖類と、前記糖類と反応してオイルを生成する作業微生物と、を備え、前記作業微生物は、シストフィロバシジウムCystofilobasidium属であることを特徴とするオイル発生システム。前記オイル発生システムは、更に前記作業微生物によって利用される窒素源を含み、前記窒素源は、アンモニアナトリウムNaであることを特徴とする請求項1に記載のオイル発生システム。前記オイルは、不飽和脂肪酸又はC14C20の脂肪酸であり、バイオディーゼルとして使用されることを特徴とする請求項1に記載のオイル発生システム。前記作業微生物は、配列番号7の18SrDNA配列、配列番号8の26SrDNA配列及び配列番号9のITSrDNA配列を有することを特徴とする請求項1に記載のオイル発生システム。炭素源と、前記炭素源と反応してオイルを生成する作業微生物と、を備え、前記作業微生物は、シストフィロバシジウムCystofilobasidium属であることを特徴とするオイル発生システム。前記作業微生物は、前記炭素源を前記オイルに分解することを特徴とする請求項5に記載のオイル発生システム。産油菌によってオイルを生成し、前記産油菌は、シストフィロバシジウムCystofilobasidium属であることを特徴とするオイル発生方法。前記産油菌は、シストフィロバシディウムビスポリディCystofilobasidiumbisporidii、シストフィロバシディウムキャピタタムCystofilobasidiumcapitatum、シストフィロバシディウムインファモミニアタムCystofilobasidiuminfirmominiatum及び他のシストフィロバシジウムCystofilobasidium属からなる群より選ぶことを特徴とする請求項7に記載のオイル発生システム。本発明の主な目的は、Cystofilobasidium属の酵母によってオイルを生産する方法を提供することにより、石油の代わりに、バイオディーゼルを代替エネルギーとして利用することができる。上述の目的を達成するために、本発明のオイル発生システムは、糖類と、前記糖類と反応してオイルを生成する作業微生物と、を備え、前記作業微生物は、シストフィロバシジウムCystofilobasidium属であることを特徴とする。上記構成の本発明に係るオイル発生システムにおいて、前記オイル発生システムは、更に前記作業微生物によって利用される窒素源を含み、前記窒素源は、アンモニアナトリウムNaである。上記構成の本発明に係るオイル発生システムにおいて、前記オイルは、不飽和脂肪酸又はC14C20の脂肪酸であり、バイオディーゼルとして使用される。上記構成の本発明に係るオイル発生システムにおいて、前記作業微生物は、配列番号7の18SrDNA配列、配列番号8の26SrDNA配列及び配列番号9のITSrDNA配列を有する。本発明のオイル発生システムは、炭素源と、前記炭素源と反応してオイルを生成する作業微生物と、を備え、前記作業微生物は、シストフィロバシジウムCystofilobasidium属であることを特徴とする。上記構成の本発明に係るオイル発生システムにおいて、前記作業微生物は、前記炭素源を前記オイルに分解する。本発明のオイル発生方法は、産油菌によってオイルを生成し、前記産油菌は、シストフィロバシジウムCystofilobasidium属であることを特徴とする。上記工程の本発明に係るオイル発生方法において、前記産油菌は、シストフィロバシディウムビスポリディCystofilobasidiumbisporidii、シストフィロバシディウムキャピタタムCystofilobasidiumcapitatum、シストフィロバシディウムインファモミニアタムCystofilobasidiuminfirmominiatum及び他のシストフィロバシジウムCystofilobasidium属からなる群より選ぶ。本発明は、Cystofilobasidium属の酵母によってオイルを生産する方法を提供することにより、石油の代わりに、バイオディーゼルを代替エネルギーとして利用することができる。以下のように、本発明を実施例に基づいて詳述するが、あくまでも例示であって、本発明の範囲はこれらの実施形態に限定されない。本発明の範囲は、特許請求の範囲に記載されており、さらに特許請求の範囲の記載と均等な意味及び範囲内での全ての変更を含んでいる。形状観察実験菌株の出処は、台湾台南の沿岸域からサンプリングされたサンプルである。前記サンプルは、抗LgYPG培養基によって最初に篩選し、そうして、光学顕微鏡で異なる外観を有する群体を観察する。観察結果は、図1のA、Bのように示す。前記群体の外観が円であり、その表面がワックスの輝きのように、滑らかに整い、ピンク色を呈す。最初に篩選したサンプルは、7日間に20°CでLgYPG培養基によって培養される。これは二番目の篩選であり、篩選したサンプルは、ナイルレッドで染色され、蛍光顕微鏡で観察される。観察結果は、図1のC、Dのように示し、オイルを有する部分が黄金色に表示される。前記観察した後、オイルを有する菌株が、7日間に20°CでGYPG培養基によって培養され、3回繰り返し精製された後、実験菌株が得られる。BLgYPG培養基の処方は、抗LgYPG培養基と同じようなものであるが、ストレプトマイシンを添加しない。CGYPG固体培養基の処方は、LgYPG培養基と同じようなものであるが、グルコース濃度が5に調整される。DGYPG液体培養基の処方は、GYPG培養基と同じようなものであるが、寒天を添加しない。何回も浄化して分離する後、オイルを生成する微生物が篩選され、前記微生物にTN01TN09という番号が付けられ、精製菌株として確認されている。篩選されたTNシリーズとは非常に似ているため、以下の実験では、TN01を無作為に選択して培養最適化の研究対象とする。TN01は、さらに走査型電子顕微鏡で観察される。図2に示すように、TN01は、楕円形菌体であり、菌体の表面は、滑らかであり、しわや突起がなく、菌糸体を持っていない。又、TN01は、出芽のような形態を有するため、酵母として推測できる。序列識別と菌株の系統樹DNA抽出A1mlのTN01を含む培地を取って、遠心分離を行って菌体を収集し、その後、1MのNaClを3回繰り返し洗う。B200μlの溶解バッファー及び20μlのプロテアーゼKを加えて、55°Cで一晩中放置する。C臭化ヘキサデシルトリメチルアンモニウムCTAB抽出溶液を加えて1mlに達し、65°Cで30分間反応させる。D400μlクロロホルムを加えて、30秒間よく混ぜる。E14000rpmで遠心分離して、懸濁液を取る。F2倍容積のCTABを加えて60分間放置する。G14000rpmで遠心分離した後、沈殿物を収集して、350μl、12MのNaClで前記沈殿物を再溶解する。H350μlのクロロホルムを加え、30秒間よく混ぜて、遠心分離して懸濁液を取る。I08倍容積のイソプロパノールを加え、-20°CでDNAを30分間放置して沈殿させる。J14000rpmで遠心分離して懸濁液を除去し、500μl、70のアルコールを加えてDNA沈殿を洗浄して遠心分離し、そうして室温でDNAを乾燥する。K滅菌した後の20μlの二重蒸留水は、そのpH値が8になれ、37°Cで再溶解する。Lゲル電気泳動を行って、DNAのサイズを確認する。又、使用されるマーカーは、Bio1kbDNAラダープロテックである。処方は蒸留水によって溶解して、HClやNaOHでそのpH値を82に調整し、加圧滅菌器で滅菌する。処方は蒸留水によって溶解して、HClやNaOHにより、そのpH値を80に調整し、加圧滅菌器で滅菌する。処方は蒸留水によって溶解して、加圧滅菌器で滅菌する。ポリメラーゼ連鎖反応PCRこの実験は、株識別ための配列増幅であり、3つの組のプライマーprimerが使用される。配列及び条件は次のとおりである。iそれぞれの条件を増幅する後、DNAのサイズを確認するために、1のゲル電気泳動を行う。ii使用されるマーカーは、Bio1kbDNAラダープロテックである。配列の比較分析18SrDNA、26SrDNAD1D2及びITSのPCR増幅の後、それらのすべてのサイズが約1200塩基対である。BLASTBasicLocalAlignmentSearchToolを行った後、TN01の配列は、Cystofilobasidiumに最も似ている。それぞれの配列は、ClustalWモジュールによって整理され、生物学の解析ソフトウェアMEGA4により分析される。又、ブートストラップ法bootstrap及び近隣結合法neighborjoiningmethodの分類方法を使って、TN系列と標準菌株の間に進化系統樹を確立する。図3は、18SrDNA配列の進化系統樹を示し、図4は、26SrDNAD1D2配列の進化系統樹を示し、図5は、ITS配列の進化系統樹を示す。そこで、Rhodotorulalamellibrachiaeは、他の種類の石油生成菌であり、対照群として提供される。それらの図から見ると、TN系列と標準菌株Cystofilobasidiumとは最も似ているが、いくつかの相違点を有している。生化学品質試験炭素源の生化学品質試験を行うために、実験菌株と標準菌株を分離して、酵母識別システムID32CREF32200、bioMerieux登録商標から購入したを使用する。A分離された実験菌株と標準菌株は、3mlのGYPG液体培養基培養液で20°Cに150rpmで2日間培養する。Bキット操作説明書に基ついて実験手順を実行する。C前記二つの菌株を有する培養液は、20°Cの培養器内で3日間培養し、ウェルプレートから培養液を取って二重蒸留水を加えて、1mlに達し、OD600により濃度を測定する。OD値は、02未満になると無反応-を示し、02から03になると弱い信号Wを示し、04から06になると強い信号を示し、06以上になると最高信号を示す。前記OD値の結果は、表2のように示す。炭素源の分類は、表3のように示す。炭素源を利用することには、TN01と標準菌株を比較すると、Cbisporidiiに最も似ている。異なる炭素源のそれぞれは、グルクロン酸乳酸LAT、メチルDグルコピラノシドMDGs、パラチノースPLE及びナトリウムGRTである。最適培養条件菌株を固体培養基から選び取って、3mlのGYPG液体培養基培養液を有する試験管に配置し、20°Cに150rpmで2日間振り動かす。そうして、500μlの前記菌株を有する培養液を取って、50mlのGYPG液体培養基を含んでいるフラスコ125mlに配置し、20°Cに150rpmで2日間振り動かして最終接種菌液を得る。前記最終接種菌液から500μlを取ってそれぞれの培養条件の培養液に入れる。すべての培養条件は、3回繰り返し、培養日数は、成長曲線によって決定され、TN01を含む培養液は、菌株成長の定常期に収集し、遠心分離を実行して凍結乾燥を行う。脂肪酸の抽出各実験群から収集された菌液をそれぞれ凍結乾燥して乾燥菌粉末を得り、脂肪酸を抽出するために、前記乾燥菌粉末を使う。生体内で脂肪酸は、トリグリセリドという形で存在し、エステル化によってグリセロールと組み合わせる三つの遊離脂肪酸であるため、エステル転移反応を必要とする。エステル転移反応は、メタノール及びトリグリセリドによって単一のメチルエステルを形成して、それを分析することができる。トリグリセリドのエステル転移反応Chisti2007抽出工程には、定量的な方法で微生物が含む脂肪酸の量を決定するため、ガスクロマトグラフGCを使用する必要があるが、実際には、サンプルがGCに接続される検出器によって検出される。検出器自体は、GCの特徴により、安定な検出結果を提供できないため、内部標試料を追加して定量化の基礎を提供するすることができる。内部標試料に対し分析物の比RRF、相対感度係数は、サンプルの量を決定するように使用される。サンプルと内部標試料は、検出プロセスに比例した増加量と減少量を提出するため、より正確に定量することができる。内部標試料の選択については、サンプルに現われなく、且つサンプルと同様の構造、化学的性質、沸点を有するものではない。有機体内に存在する脂肪酸の殆どが、偶数炭素鎖であり、奇数炭素鎖が非常に珍しい。したがって、ノナデカン酸nonadecanoicacidは内部標試料として使用されている。抽出工程は次のとおりである。A005gの乾燥菌粉末を10mlの試験管に入れ、5mlのクロロホルムとメタノールを2:1で加えてよく混ぜる。B菌体は、超音波により、2分間振って粉々になる5秒間振り、5秒間停止し、総計は4分になる。C室温で1時間に置かれた後、100μl、10mgmlの内部標試料を加える。D05mlの水を加え、2500rpmで5分間に遠心分離をして、上層の懸濁液上清を取り除く。E揺れないように、25mlのTUPtheoreticalupperphase、クロロホルム:二重蒸留水:メタノール=47483を加え、2500rpmで5分間に遠心分離をし、上層の懸濁液を取り除く。F工程DとEを繰り返して行って、室温下で窒素ガスによって沈殿物を乾燥させる。G25mLのメタノールとベンゼンを41VVの比で加えて、エステル転移反応の触媒として250μlの塩化アセチルを徐々に追加して、よく混ぜる。H密閉するようにポリテトラフルオロエチレン製の蓋をし、80°Cのオーブンに4時間置いておく。I室温下で冷却した後、15ml、7の炭酸カリウムをゆっくりと加えて反応を停止し、2500rpmで10分間に遠心分離をする。J上ベンゼン層を使い捨て遠心管に置き、室温で窒素ガスによって沈殿物を乾燥させる。K管壁に沿って05mlのヘキサンを加えてよく混ぜる。L窒素ガスで乾燥した後、250μlのヘキサンを加え、揺らして混ぜ、挿入管を有する標本ビンに注入する。開口部を密封した後、GCによって分析する。ガスクロマトグラフィーGCによって脂肪酸を分析するカラムクロマトグラフィで使用されるガラス管が低極性であり、ガラス管の仕様はDB1である。前記ガラス管は、60mの長さ、025mmの内径を有し、又、その内側にある膜が025μmの厚さを有するポリジメチルシロキサンOジメチルシリコンである。オーブンの初期温度が60°Cであり、280°Cに加熱できる。注射器の加熱温度が250°Cである。窒素ガスの流量は、12mlminであり、水素ガスの流量は、30mlminであり、空気の流量は、300mlminである。サンプルの注入量は、1μlである。火災イオン検出器FIDによってサンプルを検出することには、温度が300°Cに設定されている。結果は、GCのパッケージソフトウェアによって積分し、標試料で脂肪酸の内容物を推算する。推算式は以下の通りである。単一脂肪酸=単一脂肪酸の積分面積×標試料の濃度×100÷内部標試料の積分面積総脂肪酸=総脂肪酸の積分面積-内部標試料の積分面積×標試料の濃度×100÷内部標試料の積分面積最適な塩濃度試験0、1、25及び50の希釈海水のそれぞれを培養基に加え、5Lの発酵タンクにより培養する。24時間ごとに50mlの菌液を収集し、凍結乾燥した後、乾燥重量を測定して総菌体数及び培養日数を推定する。図6は、本発明の実施例による各塩濃度の条件下でTN01の増殖曲線を示す。第一日から第五日までは、TN01の対数増殖期である。第六日目は、TN01の成長率が穏やかになる。第七日から第十日までは、TN01の成長率が遅くなるが、上昇傾向を示している。従って、第六日目は、菌体を収集して培養する最適な時間である。1の希釈海水は、菌体を増殖するための最適な塩濃度を有する。最悪は25であり、次善は0と50である。10日間に培養した後、1の希釈海水の条件下での菌体の乾燥重量は、1309gLに達し、又、0、25及び50のそれぞれは、1184gL、1073gL及び1131gLに対応する。第六日目で収集された菌体に対し、乾燥重量を測定し、且つ脂肪酸を分析する結果は、図7のように示す。0、1、25及び50の希釈海水により培養された菌体50mlは、それぞれに対応する乾燥重量が031g、039g、0266g及び0297gであり、それぞれに対応する総脂肪酸含量が5091、5124、4431及び4176である。脂肪酸の分析結果と増殖曲線の結果を比較してみると、後続の最適化実験には、1の塩濃度を有する希釈海水を採用する。培養温度の範囲試験3つの異なる温度条件下でTN01を50mlのGYPG培養液に培養し、六日後に菌体を収集し、乾燥重量を測定し、且つ脂肪酸を分析する結果は、図8のように示す。20°Cで培養すると、最も好ましいバイオマスと脂肪酸の割合があり、28°Cで培養すると増殖状況が悪くなり、37°Cで培養すると、20°Cとはかなり異なり、TN01はほとんど増殖しない。は、20°C、28°C及び37°Cで培養された菌体は、それぞれに対応する乾燥重量が0317g、0027g及び0023gであり、それぞれに対応する総脂肪酸含量が531、440及び063である。培養液の簡素化未来では、工業的規模で発酵培養を実行する時、最も単純な培養液によりコストを削減する効果に達することが望まれる。したがって、元のGYPG培養液は、次のように改善される。最適なpH値試験菌体に対するpH値の影響及び最適な培養条件を議論するために、pH値の範囲は、3~11に設定されている。生物体が生成する代謝物によりpH値に影響を及ぼすため、以下の緩衝剤は、前記影響を減少するために、GYPG培養液をベースとして、各条件に応じて追加される。酢酸を使用してpH値を3~4に調整し、NaOHまたはHClを用いてpH値を5~11に調整する。TN01は、各pH値、最適な温及び150rpmの条件で6日間に培養される。六日後に50mlの菌液を収集して乾燥した後、乾燥重量を測定する結果は、図10のように示す。pH値は3~11になると、TN01菌体の乾燥重量のそれぞれは00423g、0025g、0412g、045g、0479g、0596g、0369g、0168g及び01gであり、従って、菌体成長のための最適なpH値は8である。炭素源の利用試験従属栄養体が成長するため、炭素源を必要とする。炭素源の種類については、微生物の成長とオイルの蓄積に影響を及ぼす。酵母の代謝経路に基づき、炭素源は、単糖ヘキソースとペントース、二糖、多糖、及び三炭素鎖の長さを有する炭素源を含む。更に、微生物の成長とオイルの蓄積に対し、最適な炭素源を探すために、グリセリンは、オイルの炭素源として使用される。培養液の処方は次のとおりである。5の炭素源01酵母抽出物01ペプトン01ゼラチン炭素源の種類:グルコース、フルクトース、乳糖、マルトース、蔗糖、グリセロール、ソルビトール、澱粉、酢酸結果としての乾燥重量と総脂肪酸含量は、図11のように示す。TN01が培養されて、最も好ましいバイオマスを生成させる炭素源としては、澱粉であり、その乾燥重量は、0382gである。次善の炭素源としては、蔗糖であり、その乾燥重量は、0364gである。TN01が培養されて、最も好ましい総脂肪酸含量を生成させる炭素源としては、蔗糖であり、総脂肪酸含量は、70である。次善の炭素源としては、グルコースであり、総脂肪酸含量は、56である。乳糖と酢酸によってTN01を培養して生成するバイオマスが最も好ましくなく、その総脂肪酸含量も最も少ない。窒素源の利用試験微生物が成長するため、窒素源を必要とする。研究によると、微生物は異なる窒素源により、オイルの蓄積に影響を与えることができる。従って、最適な窒素源を発見するため、有機窒素源、無機窒素源により、微生物の成長及びオイルの蓄積を観察する。培養液の処方は次のとおりである。5グルコース01酵母エキス01窒素源01ゼラチン窒素源の種類:尿素、ペプトン、トリプトン、ソイトン、硝酸アンモニウム、硫酸アンモニウム、塩化アンモニウム、ナトリウムアンモニウム、チオ硫酸ナトリウム。チオ硫酸ナトリウムは、窒素源を持っていないため、対照群として提供する。結果としての乾燥重量と総脂肪酸含量は、図12のように示す。TN01が培養されて、最も好ましいバイオマスを生成させる窒素源としては、尿素であり、その乾燥重量は、0318gである。次善の窒素源としては、順番的にはソイトン、ペプトン及びトリプトンであり、その乾燥重量は、0304g0296g及び0293gである。TN01が培養されて、最も好ましい総脂肪酸含量を生成させる窒素源としては、対照群のチオ硫酸ナトリウムであり、その総脂肪酸含量は、666である。次善の窒素源としては、順番的には塩化アンモニウム、トリプトンであり、それらの総脂肪酸含量は、523、519である。糖類濃度試験炭素は、脂肪酸を形成する基本単位である。発酵培養は、通常、流加培養法fedbatchによってオイルの蓄積を調整する。従って、炭素源とする高濃度の糖類で微生物の成長とオイルの蓄積に与えた影響を観察する。実験群は、GYPG培養液をベースとして、添加されたグルコースのそれぞれは、50gL、100gL、150gL及び200gLである。結果としては、図13のように示す。グルコースの濃度が、50gL、100gL、150gL及び200gLであることに対し、TN01菌体の乾燥重量のそれぞれは、02680g、02580g、02900g及び02960gであり、総脂肪酸含量は475、435、305及び243である。グルコースの濃度は150gLになる時、最も好ましいバイオマスを有し、グルコースの濃度は50gLになる時、最も好ましい総脂肪酸含量を有する。TN01の脂肪酸の分類TN01は、GYPG培養液で培養され、乾燥された後、TN01の菌体が収集され、脂肪酸が抽出される。TN01の脂肪酸についての詳細な分類を知るため、抽出されたサンプルに対し、GCMS分析をし、表4に示すように、ほとんどの脂肪酸は、C14の、C16及びC18シリーズの低飽和脂肪酸である。それらの低飽和脂肪酸は、酸化されにくく、飽和脂肪酸よりもバイオディーゼルの製造に適している。バイオディーゼルの製造における熱と酸化剤は、飽和脂肪酸をクラッキングさせる可能性があり、酸化防止剤を添加するため、余分な費用を負担する必要がある。また、TN01を最適化する前に、50の総脂肪酸に達するので、バイオディーゼルの原料として高い潜在能力を有する。TN01と他のCystofilobasidiumの脂肪酸含量の試験TN01、CystofilobasidiumbisporidiiBCRC22462、CystofilobasidiumcapitatumBCRC22464及びCystofilobasidiuminfirmominiatumBCRC2246BCRC:生物資源の収集と研究センターを、次の培養基で培養する。液体培養基を20°C、150rpmで7日間に揺らし続けて培養を行う。脂肪酸含量を分析し、その結果は表5にように示す。他のCystofilobasidiumは、確かに、オイルを生成する能力を持っているが、TN01よりも良い生成能力を持っていない。以上の説明によると、当業者であれば本発明の技術思想を逸脱しない範囲で、多様な変更及び修正が可能であることが分かる。従って、本発明の技術的な範囲は、明細書の詳細な説明に記載された内容に限らず、特許請求の範囲によって定めなければならない。