"生体親和性を有する高分子ブロックと細胞とを含み、該複数個の細胞間の隙間に複数個の該高分子ブロックが配置されている、細胞構造体。該高分子ブロックの大きさが1μm以上700μm以下である、請求項1に記載の細胞構造体。該高分子ブロックの大きさが10μm以上300μm以下である請求項2に記載の細胞構造体。厚さ又は直径が400μm以上3cm以下である、請求項1~3のいずれか一項に記載の細胞構造体。厚さ又は直径が720μm以上1cm以下である、請求項4に記載の細胞構造体。前記高分子ブロックと前記細胞との比率が、細胞1個当り0.0000001μg以上1.0μg以下である請求項1~5のいずれか一項に記載の細胞構造体。生体親和性を有する高分子ブロックと細胞含有培養液との混合物をインキュベートすることによって製造される、請求項1から6の何れか1項に記載の細胞構造体。生体親和性を有する高分子が、生分解性材料である、請求項1から7の何れか1項に記載の細胞構造体。生体親和性を有する高分子が、ポリペプチド、ポリ乳酸、ポリグリコール酸、PLGA、ヒアルロン酸、グリコサミノグリカン、プロテオグリカン、コンドロイチン、セルロース、アガロース、カルボキシメチルセルロース、キチン、又はキトサンである、請求項1から8の何れか1項に記載の細胞構造体。生体親和性を有する高分子が、ゼラチン、コラーゲン、エラスチン、フィブロネクチン、プロネクチン、ラミニン、テネイシン、フィブリン、フィブロイン、エンタクチン、トロンボスポンジン、又はレトロネクチンである、請求項1から9の何れか1項に記載の細胞構造体。生体親和性を有する高分子が架橋されている、請求項1から10の何れか1項に記載の細胞構造体。架橋がアルデヒド類、縮合剤、又は酵素により施される、請求項11に記載の細胞構造体。生体親和性を有する高分子が、遺伝子組み換えゼラチンである、請求項1から12の何れか1項に記載の細胞構造体。前記生体親和性を有する高分子が、細胞接着性シグナルを一分子中に2以上有する請求項13に記載の細胞構造体。遺伝子組み換えゼラチンが、式:A-[Gly-X-Yn]m-B式中、Aは任意のアミノ酸又はアミノ酸配列を示し、Bは任意のアミノ酸又はアミノ酸配列を示し、n個のXはそれぞれ独立にアミノ酸の何れかを示し、n個のYはそれぞれ独立にアミノ酸の何れかを示し、nは3~100の整数を示し、mは2~10の整数を示す。なお、n個のGlyXYはそれぞれ同一でも異なっていてもよい。で示される、請求項13に記載の細胞構造体。遺伝子組み換えゼラチンが、式:GlyAlaPro[Gly-X-Y63]3-Gly式中、63個のXはそれぞれ独立にアミノ酸の何れかを示し、63個のYはそれぞれ独立にアミノ酸の何れかを示す。なお、63個のGlyXYはそれぞれ同一でも異なっていてもよい。で示される、請求項13又は15に記載の細胞構造体。遺伝子組み換えゼラチンが、1配列番号1に記載のアミノ酸配列、又は2配列番号1に記載のアミノ酸配列と80以上の相同性を有し、生体親和性を有するアミノ酸配列を有する、請求項13から16の何れか1項に記載の細胞構造体。生体親和性を有する高分子ブロックと細胞含有培養液との混合物をインキュベートする工程を含む、請求項1から17の何れかに記載の細胞構造体の製造方法。生体親和性を有する高分子ブロックと細胞含有培養液との混合物をインキュベートする工程において培地交換を行う、請求項18に記載の方法。生体親和性を有する高分子ブロックと細胞含有培養液との混合物をインキュベートする工程において、培地を分化培地又は増殖培地に交換する、請求項19に記載の方法。生体親和性を有する高分子ブロックと細胞含有培養液との混合物をインキュベートする工程において、生体親和性を有する高分子ブロックをさらに添加する、請求項18から20の何れか1項に記載の方法。請求項18から21の何れか1項に記載の方法により製造される、細胞構造体。請求項1から17の何れかに記載の細胞構造体の複数個を融合することによって得られる、細胞構造体。請求項1から17の何れかに記載の細胞構造体の複数個を融合する工程を含む、請求項23に記載の細胞構造体の製造方法。生体親和性を有する複数個の高分子ブロックと、複数個の細胞とを含み、該複数の細胞により形成される複数個の隙間の一部または全部に、一または複数個の前記高分子ブロックが配置されている細胞構造体を複数個融合させる工程を含む、細胞構造体の製造方法。前記高分子ブロックの大きさが1μm以上700μm以下である、請求項25に記載の細胞構造体の製造方法。前記融合前の各細胞構造体の厚さ又は直径が10μm以上1cm以下であり、前記融合後の厚さ又は直径が400μm以上3cm以下である、請求項25または26記載の細胞構造体の製造方法。生体親和性を有する複数個の第一の高分子ブロックと、複数個の細胞とを含み、該複数の細胞により形成される複数個の隙間の一部または全部に、一または複数個の前記高分子ブロックが配置されている細胞構造体に、更に、第二の高分子ブロックを添加しインキュベートする工程を含む、細胞構造体の製造方法。前記第一の高分子ブロックの大きさが1μm以上700μm以下である、請求項28に記載の細胞構造体の製造方法。前記第二の高分子ブロックの大きさが1μm以上700μm以下である、請求項28または29に記載の細胞構造体の製造方法。前記第二の高分子ブロックを添加しインキュベートした後の、厚さ又は直径が400μm以上3cm以下である、請求項28から30のいずれか一項に記載の細胞構造体の製造方法。請求項25~31のいずれか一項に記載の細胞構造体の製造方法により製造される、細胞構造体。細胞移植、細胞培養または毒性評価用途に使用する、請求項32記載の細胞構造体。本発明は、組織再生に十分な厚さを有し、かつ構造体中で細胞が均一に存在するような細胞構造体を提供することを課題とした。更に本発明は、目的細胞以外の細胞を使用することなく製造可能な細胞構造体を提供することを課題とした。更に本発明は、細胞3次元構造体同士が自然に融合可能であるような細胞構造体を提供することを課題とした。本発明者らは、生体親和性を有する高分子ブロック生体親和性を有した高分子材料からなる塊と細胞とをモザイク状に3次元配置することによって、外部から細胞3次元構造体の内部への栄養送達を可能とし、十分な厚みを有し、かつ構造体中で細胞が均一に存在するような細胞3次元構造体を形成することに成功した。さらに、上記細胞3次元構造体の外周部に存在する細胞の働きによって、細胞3次元構造体同士の自然融合が可能であることも見出した。本発明はこれらの知見に基づいて完成したものである。即ち、本発明の態様は以下に関する。1生体親和性を有する高分子ブロックと細胞とを含み、該複数個の細胞間の隙間に複数個の該高分子ブロックが配置されている、細胞構造体。2該高分子ブロックの大きさが1μm以上700μm以下である、1に記載の細胞構造体。3該高分子ブロックの大きさが10μm以上300μm以下である2に記載の細胞構造体。4厚さ又は直径が400μm以上3cm以下である、1~3のいずれかに記載の細胞構造体。5厚さ又は直径が720μm以上1cm以下である、4に記載の細胞構造体。6前記高分子ブロックと前記細胞との比率が、細胞1個当り0.0000001μg以上1.0μg以下である1~5のいずれかに記載の細胞構造体。7生体親和性を有する高分子ブロックと細胞含有培養液との混合物をインキュベートすることによって製造される、1から6の何れかに記載の細胞構造体。8生体親和性を有する高分子が、生分解性材料である、1から7の何れかに記載の細胞構造体。9生体親和性を有する高分子が、ポリペプチド、ポリ乳酸、ポリグリコール酸、PLGA、ヒアルロン酸、グリコサミノグリカン、プロテオグリカン、コンドロイチン、セルロース、アガロース、カルボキシメチルセルロース、キチン、又はキトサンである、1から8の何れかに記載の細胞構造体。10生体親和性を有する高分子が、ゼラチン、コラーゲン、エラスチン、フィブロネクチン、プロネクチン、ラミニン、テネイシン、フィブリン、フィブロイン、エンタクチン、トロンボスポンジン、又はレトロネクチンである、1から9の何れかに記載の細胞構造体。11生体親和性を有する高分子が架橋されている、1から10の何れかに記載の細胞構造体。12架橋がアルデヒド類、縮合剤、又は酵素により施される、11に記載の細胞構造体。13生体親和性を有する高分子が、遺伝子組み換えゼラチンである、1から12の何れかに記載の細胞構造体。14前記生体親和性を有する高分子が、細胞接着性シグナルを一分子中に2以上有する13に記載の細胞構造体。15遺伝子組み換えゼラチンが、式:A-[Gly-X-Yn]m-B式中、Aは任意のアミノ酸又はアミノ酸配列を示し、Bは任意のアミノ酸又はアミノ酸配列を示し、n個のXはそれぞれ独立にアミノ酸の何れかを示し、n個のYはそれぞれ独立にアミノ酸の何れかを示し、nは3~100の整数を示し、mは2~10の整数を示す。なお、n個のGlyXYはそれぞれ同一でも異なっていてもよい。で示される、13に記載の細胞構造体。16遺伝子組み換えゼラチンが、式:GlyAlaPro[Gly-X-Y63]3-Gly式中、63個のXはそれぞれ独立にアミノ酸の何れかを示し、63個のYはそれぞれ独立にアミノ酸の何れかを示す。なお、63個のGlyXYはそれぞれ同一でも異なっていてもよい。で示される、13又は15に記載の細胞構造体。17遺伝子組み換えゼラチンが、1配列番号1に記載のアミノ酸配列、又は2配列番号1に記載のアミノ酸配列と80以上の相同性を有し、生体親和性を有するアミノ酸配列を有する、13から16の何れかに記載の細胞構造体。18生体親和性を有する高分子ブロックと細胞含有培養液との混合物をインキュベートする工程を含む、1から17の何れかに記載の細胞構造体の製造方法。19生体親和性を有する高分子ブロックと細胞含有培養液との混合物をインキュベートする工程において培地交換を行う、18に記載の方法。20生体親和性を有する高分子ブロックと細胞含有培養液との混合物をインキュベートする工程において、培地を分化培地又は増殖培地に交換する、19に記載の方法。21生体親和性を有する高分子ブロックと細胞含有培養液との混合物をインキュベートする工程において、生体親和性を有する高分子ブロックをさらに添加する、18から20の何れかに記載の方法。2218から21の何れかに記載の方法により製造される、細胞構造体。231から17の何れかに記載の細胞構造体の複数個を融合することによって得られる、細胞構造体。241から17の何れかに記載の細胞構造体の複数個を融合する工程を含む、23に記載の細胞構造体の製造方法。25生体親和性を有する複数個の高分子ブロックと、複数個の細胞とを含み、該複数の細胞により形成される複数個の隙間の一部または全部に、一または複数個の前記高分子ブロックが配置されている細胞構造体を複数個融合させる工程を含む、細胞構造体の製造方法。26前記高分子ブロックの大きさが1μm以上700μm以下である、25に記載の細胞構造体の製造方法。27前記融合前の各細胞構造体の厚さ又は直径が10μm以上1cm以下であり、前記融合後の厚さ又は直径が400μm以上3cm以下である、25または26に記載の細胞構造体の製造方法。28生体親和性を有する複数個の第一の高分子ブロックと、複数個の細胞とを含み、該複数の細胞により形成される複数個の隙間の一部または全部に、一または複数個の前記高分子ブロックが配置されている細胞構造体に、更に、第二の高分子ブロックを添加しインキュベートする工程を含む、細胞構造体の製造方法。29前記第一の高分子ブロックの大きさが1μm以上700μm以下である、28に記載の細胞構造体の製造方法。30前記第二の高分子ブロックの大きさが1μm以上700μm以下である、28または29に記載の細胞構造体の製造方法。31前記第二の高分子ブロックを添加しインキュベートした後の、厚さ又は直径が400μm以上3cm以下である、28から30のいずれかに記載の細胞構造体の製造方法。3225~31のいずれかに記載の細胞構造体の製造方法により製造される、細胞構造体。33細胞移植、細胞培養または毒性評価用途に使用する、32に記載の細胞構造体。本発明の細胞構造体は、組織再生に十分な厚さを有し、かつ構造体中で細胞が均一に存在している。また本発明の細胞構造体は、目的細胞以外の細胞を使用することなく製造可能である。更に本発明の細胞構造体は、細胞構造体同士が自然に融合可能である。本発明の細胞構造体は、機能障害や機能不全に陥った生体組織臓器の再生を計る再生医療に有用である。以下、本発明の実施の形態について詳細に説明する。本発明の細胞構造体は、生体親和性を有する高分子ブロックと細胞とを含み、該複数個の細胞間の隙間に複数個の該高分子ブロックが配置されていることを特徴とするものである。実施態様として、生体親和性を有する、複数個の高分子ブロックと、複数個の細胞とを含み、該複数の細胞により形成される複数個の隙間の一部または全部に、一または複数個の前記高分子ブロックが配置されている細胞構造体が挙げられる。本発明にかかる高分子ブロックの形状は特に限定されるものではないが、例えば、不定形、球状、粒子状、粉状、多孔質状、繊維状、紡錘状、扁平状およびシート状であり、好ましくは、不定形、球状、粒子状、粉状および多孔質状であり、より好ましくは不定形である。不定形とは、表面形状が均一でないもののことを示し、例えば、岩のような凹凸を有する物を示す。本発明の細胞構造体は、複数個の細胞間の隙間に複数個の該高分子ブロックが配置されているが、ここで、細胞間の隙間とは、構成される細胞により、閉じられた空間である必要はなく、細胞により挟まれていればよい。なお、すべての細胞間に隙間がある必要はなく、細胞同士が接触している箇所があってもよい。高分子ブロックを介した細胞間の隙間の距離、即ち、ある細胞とその細胞から最短距離に存在する細胞を選択した際の隙間距離は特に制限されるものではないが、高分子ブロックの大きさであることが好ましく、好適な距離も高分子ブロックの好適な大きさの範囲である。また、本発明にかかる高分子ブロックは、細胞により挟まれた構成となるが、すべての高分子ブロック間に細胞がある必要はなく、高分子ブロック同士が接触している箇所があってもよい。細胞を介した高分子ブロック間の距離、即ち、高分子ブロックとその高分子ブロックから最短距離に存在する高分子ブロックを選択した際の距離は特に制限されるものではないが、使用される細胞が1~数個集まった際の細胞の塊の大きさであることが好ましく、例えば、10μm以上1000μm以下であり、好ましくは10μm以上100μm以下であり、より好ましくは10μm以上50μm以下である。1生体親和性を有する高分子材料1-1高分子材料本発明で用いる生体親和性を有する高分子は、生体に親和性を有するものであれば、生体内で分解されるか否かは特に限定されないが、生分解性材料で構成されることが好ましい。非生分解性材料として具体的には、PTFE、ポリウレタン、ポリプロピレン、ポリエステル、塩化ビニル、ポリカーボネート、アクリル、ステンレス、チタン、シリコーン、MPCから選択される少なくとも1つ以上から成る材料を挙げることができる。生分解性材料としては、具体的にはポリペプチド、ポリ乳酸、ポリグリコール酸、PLGA、ヒアルロン酸、グリコサミノグリカン、プロテオグリカン、コンドロイチン、セルロース、アガロース、カルボキシメチルセルロース、キチン、キトサンから選択される少なくとも1つ以上からなる材料を挙げることができる。上記の中でも、ポリペプチドが特に好ましい。尚、これら高分子材料には細胞接着性を高める工夫がなされていてもよく、具体的な方法としては1.基材表面に対する細胞接着基質フィブロネクチン、ビトロネクチン、ラミニンや細胞接着配列アミノ酸一文字表記で現わされる、RGD配列、LDV配列、REDV配列、YIGSR配列、PDSGR配列、RYVVLPR配列、LGTIPG配列、RNIAEIIKDI配列、IKVAV配列、LRE配列、DGEA配列、及びHAV配列ペプチドによるコーティング、2.基材表面のアミノ化、カチオン化、3.基材表面のプラズマ処理、コロナ放電による親水性処理といった方法が利用され得る。ポリペプチドの種類は生体親和性を有するものであれば特に限定されないが、例えば、ゼラチン、コラーゲン、エラスチン、フィブロネクチン、プロネクチン、ラミニン、テネイシン、フィブリン、フィブロイン、エンタクチン、トロンボスポンジン、レトロネクチンが好ましく、最も好ましくはゼラチン、コラーゲン、アテロコラーゲンである。本発明で用いるためのゼラチンとしては、天然ゼラチン、又は遺伝子組み換えゼラチンが好ましい。さらに好ましくは、遺伝子組み換えゼラチンである。ここでいう天然ゼラチンとは天然由来のコラーゲンより作られたゼラチンを意味する。遺伝子組み換えゼラチンについては、本明細書中後記する。本発明で用いる生体親和性を有する高分子の親水性値1/IOB値は、0から1.0が好ましい。より好ましくは、0から0.6であり、さらに好ましくは0から0.4である。IOBとは、藤田穆により提案された有機化合物の極性非極性を表す有機概念図に基く、親疎水性の指標であり、その詳細は、例えば、PharmaceuticalBulletinvol22pp1631731954、化学の領域vol1110pp7197251957、フレグランスジャーナルvol50pp79821981等で説明されている。簡潔に言えば、全ての有機化合物の根源をメタンCH4とし、他の化合物はすべてメタンの誘導体とみなして、その炭素数、置換基、変態部、環等にそれぞれ一定の数値を設定し、そのスコアを加算して有機性値OV、無機性値IVを求め、この値を、有機性値をX軸、無機性値をY軸にとった図上にプロットしていくものである。有機概念図におけるIOBとは、有機概念図における有機性値OVに対する無機性値IVの比、すなわち無機性値IV/有機性値OVをいう。有機概念図の詳細については、新版有機概念図-基礎と応用-甲田善生等著、三共出版、2008を参照されたい。本明細書中では、IOBの逆数をとった1/IOB値で親疎水性を表している。1/IOB値が小さい0に近づく程、親水性であることを表す表記である。本発明で用いる高分子の1/IOB値を上記範囲とすることにより、親水性が高く、かつ、吸水性が高くなることから、栄養成分の保持に有効に作用し、結果として、本発明の細胞3次元構造体モザイク細胞塊における細胞の安定化生存しやすさに寄与するものと推定される。本発明で用いる生体親和性を有する高分子がポリペプチドである場合は、GrandaverageofhydropathicityGRAVY値で表される親疎水性指標において、0.3以下、マイナス9.0以上であることが好ましく、0.0以下、マイナス7.0以上であることがさらに好ましい。GrandaverageofhydropathicityGRAVY値は、GasteigerEHooglandCGattikerADuvaudSWilkinsMRAppelRDBairochAProteinIdentificationandAnalysisToolsontheExPASyServerJohnMWalkerTheProteomicsProtocolsHandbookHumanaPresspp571607及びGasteigerEGattikerAHooglandCIvanyiIAppelRDBairochAExPASytheproteomicsserverforindepthproteinknowledgeandanalysisNucleicAcidsRes3137843788の方法により得ることができる。本発明で用いる高分子のGRAVY値を上記範囲とすることにより、親水性が高く、かつ、吸水性が高くなることから、栄養成分の保持に有効に作用し、結果として、本発明の細胞3次元構造体モザイク細胞塊における細胞の安定化生存しやすさに寄与するものと推定される。1-2架橋本発明で用いる生体親和性を有する高分子材料は、架橋されているものでもよいし、架橋されていないものでもよいが、架橋されているものが好ましい。架橋方法としては、熱架橋、化学架橋、アルデヒド類例えば、ホルムアルデヒド、グルタルアルデヒドなどによる架橋、縮合剤カルボジイミド、シアナミドなどによる架橋、酵素架橋、光架橋、UV架橋、疎水性相互作用、水素結合、イオン性相互作用など公知の方法を用いることができるが、グルタルアルデヒドを用いた架橋法、熱架橋法が好ましい。光架橋としては、光反応性基を導入した高分子への光照射、あるいは光増感剤の存在化での光照射によるものが挙げられる。光反応性基としては、例えば、シンナミル基、クマリン基、ジチオカルバミル基、キサンテン色素、カンファキノンが挙げられる。酵素による架橋を行う場合、酵素としては、高分子材料間の架橋作用を有するものであれば特に限定されないが、好ましくはトランスグルタミナーゼおよびラッカーゼ、最も好ましくはトランスグルタミナーゼを用いて架橋を行うことができる。トランスグルタミナーゼで酵素架橋するタンパク質の具体例としては、リジン残基およびグルタミン残基を有するタンパク質であれば特に制限されない。トランスグルタミナーゼは、哺乳類由来のものであっても、微生物由来のものであってもよく、具体的には、味の素株製アクティバシリーズ、試薬として発売されている哺乳類由来のトランスグルタミナーゼ、例えば、オリエンタル酵母工業株製、UpstateUSAInc製、BiodesignInternational製などのモルモット肝臓由来トランスグルタミナーゼ、ヤギ由来トランスグルタミナーゼ、ウサギ由来トランスグルタミナーゼなど、ヒト由来の血液凝固因子FactorXIIIa、HaematologicTechnologies,Inc社などが挙げられる。高分子材料の架橋には、高分子材料の溶液と架橋剤を混合する過程とそれらの溶液の反応する過程の2つの過程を有する。本発明において高分子材料を架橋剤で処理する際の混合温度は、溶液を混合できる限り特に限定されないが、好ましくは、0°C~100°Cであり、より好ましくは0°C~40°Cであり、更に好ましくは0°C~30°Cであり、更に好ましくは3°C~25°Cであり、更に好ましくは3°C~15°Cであり、更に好ましくは3°C~10°Cであり、特に好ましくは3°C~7°Cである。高分子材料と架橋剤の反応過程では、温度を上昇させることができる。反応温度としては架橋が進行する限りは特に限定はないが、高分子材料の変性や分解を考慮すると実質的には-100°C~200°Cであり、より好ましくは0°C~60°Cであり、より好ましくは0°C~40°Cであり、より好ましくは3°C~25°Cであり、より好ましくは3°Cから15°Cであり、さらに好ましくは3°C~10°Cであり、特に好ましくは3°C~7°Cである。また、架橋剤を使用しなくても、高分子材料の架橋を行うことができる。当該架橋法は特に限定されるものではないが、具体的には熱架橋法が挙げられる。架橋剤を使用しない架橋法する際の反応温度は、架橋ができる限り特に限定されないが、好ましくは、-100°C~500°Cであり、より好ましくは0°C~300°Cであり、更に好ましくは50°C~300°Cであり、更に好ましくは100°C~250°Cであり、更に好ましくは120°C~200°Cである。1-3遺伝子組み換えゼラチン本発明にかかる遺伝子組み換えゼラチンとは遺伝子組み換え技術により作られたゼラチン類似のアミノ酸配列を有するポリペプチドもしくは蛋白様物質を意味する。本発明で用いることができる遺伝子組み換えゼラチンは、コラーゲンに特徴的なGlyXYで示される配列X及びYはそれぞれ独立にアミノ酸の何れかを示すの繰り返しを有するものが好ましい複数個のGlyXYはそれぞれ同一でも異なっていてもよい。好ましくは、細胞接着シグナルを一分子中に2配列以上含まれている。本発明で用いる遺伝子組み換えゼラチンとしては、コラーゲンの部分アミノ酸配列に由来するアミノ酸配列を有する遺伝子組み換えゼラチンを用いることができ、例えばEP1014176A2、US6992172、WO200485473、WO2008103041等に記載のものを用いることができるが、これらに限定されるものではない。本発明で用いる遺伝子組み換えゼラチンとして好ましいものは、以下の態様の遺伝子組み換えゼラチンである。本発明で用いる遺伝子組み換えゼラチンは天然のゼラチン本来の性能から、生体適合性に優れ、且つ天然由来ではないことでBSEなどの懸念がなく、非感染性に優れている。また、本発明で用いる遺伝子組み換えゼラチンは天然のものに比して均一であり、配列が決定されているので、強度、分解性においても後述の架橋等によってブレを少なく精密に設計することが可能である。遺伝子組み換えゼラチンの分子量は2KDa以上100KDa以下であることが好ましい。より好ましくは25KDa以上95KDa以下である。より好ましくは5KDa以上90KDa以下である。最も好ましくは、10KDa以上90KDa以下である。遺伝子組み換えゼラチンは、コラーゲンに特徴的なGly-X-Yで示される配列の繰り返しを有する。ここで、複数個のGlyXYはそれぞれ同一でも異なっていてもよい。Gly-X-Yにおいて、Glyはグリシン、X及びYは、任意のアミノ酸好ましくは、グリシン以外の任意のアミノ酸を表す。コラーゲンに特徴的なGXY配列とは、ゼラチンコラーゲンのアミノ酸組成および配列における、他のタンパク質と比較して非常に特異的な部分構造である。この部分においてはグリシンが全体の約3分の1を占め、アミノ酸配列では3個に1個の繰り返しとなっている。グリシンは最も簡単なアミノ酸であり、分子鎖の配置への束縛も少なく、ゲル化に際してのヘリックス構造の再生に大きく寄与している。X,Yであらわされるアミノ酸はイミノ酸プロリン、オキシプロリンが多く含まれ、全体の10~45を占めることが好ましい。好ましくはその配列の80以上、更に好ましくは95以上、最も好ましくは99以上のアミノ酸がGXYの繰り返し構造であることが好ましい。一般的なゼラチンは極性アミノ酸のうち、電荷を持つものと無電荷のものが1:1で存在する。ここで、極性アミノ酸とは具体的にシステイン、アスパラギン酸、グルタミン酸、ヒスチジン、リジン、アスパラギン、グルタミン、セリン、スレオニン、チロシン、アルギニンを指し、このうち極性無電荷アミノ酸とはシステイン、アスパラギン、グルタミン、セリン、スレオニン、チロシンを指す。本発明で用いる遺伝子組み換えゼラチンにおいては、構成する全アミノ酸のうち、極性アミノ酸の割合が10~40であり、好ましくは20~30である。且つ該極性アミノ酸中の無電荷アミノ酸の割合が5以上20未満、好ましくは10未満であることが好ましい。さらに、セリン、スレオニン、アスパラギン、チロシン、システインのうちいずれか1アミノ酸、好ましくは2以上のアミノ酸を配列上に含まないことが好ましい。一般にポリペプチドにおいて、細胞接着シグナルとして働く最小アミノ酸配列が知られている例えば、株式会社永井出版発行病態生理Vol.9、No.71990年527頁。本発明で用いる遺伝子組み換えゼラチンは、これらの細胞接着シグナルを一分子中に2以上有することが好ましい。具体的な配列としては、接着する細胞の種類が多いという点で、アミノ酸一文字表記で現わされる、RGD配列、LDV配列、REDV配列、YIGSR配列、PDSGR配列、RYVVLPR配列、LGTIPG配列、RNIAEIIKDI配列、IKVAV配列、LRE配列、DGEA配列、及びHAV配列の配列が好ましく、さらに好ましくはRGD配列、YIGSR配列、PDSGR配列、LGTIPG配列、IKVAV配列及びHAV配列、特に好ましくはRGD配列である。RGD配列のうち、好ましくはERGD配列である。細胞接着シグナルを有する遺伝子組み換えゼラチンを用いることにより、細胞の基質産生量を向上させることができる。例えば、細胞として、間葉系幹細胞を用いた軟骨分化の場合には、グリコサミノグリカンGAGの産生を向上させることができる。本発明で用いる遺伝子組み換えゼラチンにおけるRGD配列の配置として、RGD間のアミノ酸数が0~100の間、好ましくは25~60の間で均一でないことが好ましい。この最小アミノ酸配列の含有量は、細胞接着増殖性の観点から、タンパク質1分子中3~50個が好ましく、さらに好ましくは4~30個、特に好ましくは5~20個である。最も好ましくは12個である。本発明で用いる遺伝子組み換えゼラチンにおいて、アミノ酸総数に対するRGDモチーフの割合は少なくとも0.4であることが好ましく、遺伝子組み換えゼラチンが350以上のアミノ酸を含む場合に、350のアミノ酸の各ストレッチが少なくとも1つのRGDモチーフを含むことが好ましい。アミノ酸総数に対するRGDモチーフの割合は、更に好ましくは少なくとも0.6であり、更に好ましくは少なくとも0.8であり、更に好ましくは少なくとも1.0であり、更に好ましくは少なくとも1.2であり、最も好ましくは少なくとも1.5である。遺伝子組み換えゼラチン内のRGDモチーフの数は、250のアミノ酸あたり、好ましくは少なくとも4、更に好ましくは6、更に好ましくは8、更に好ましくは12以上16以下である。RGDモチーフの0.4という割合は、250のアミノ酸あたり、少なくとも1つのRGD配列に対応する。RGDモチーフの数は整数であるので、0.4の特徴を満たすには、251のアミノ酸からなるゼラチンは、少なくとも2つのRGD配列を含まなければならない。好ましくは、本発明の遺伝子組み換えゼラチンは、250のアミノ酸あたり、少なくとも2つのRGD配列を含み、より好ましくは250のアミノ酸あたり、少なくとも3つのRGD配列を含み、さらに好ましくは250のアミノ酸あたり、少なくとも4つのRGD配列を含む。本発明の遺伝子組み換えゼラチンのさらなる態様としては、少なくとも4つのRGDモチーフ、好ましくは6つ、より好ましくは8つ、さらに好ましくは12以上16以下のRGDモチーフを含む。また、遺伝子組み換えゼラチンは部分的に加水分解されていてもよい。本発明で用いる遺伝子組み換えゼラチンは、A[Gly-X-Yn]mBの繰り返し構造を有することが好ましい。mとして好ましくは2~10、好ましくは3~5である。nは3~100が好ましく、15~70がさらに好ましく、50~65が最も好ましい。繰り返し単位には天然に存在するコラーゲンの配列単位を複数結合することが好ましい。ここで言う天然に存在するコラーゲンとは天然に存在するものであればいずれであっても構わないが、好ましくはI型、II型、III型、IV型、およびV型である。より好ましくは、I型、II型、III型である。別の形態によると、該コラーゲンの由来は好ましくは、ヒト、ウシ、ブタ、マウス、ラットである。より好ましくはヒトである。本発明で用いる遺伝子組み換えゼラチンの等電点は、好ましくは5~10であり、より好ましくは6~10であり、さらに好ましくは7~95である。好ましくは、遺伝子組み換えゼラチンは脱アミン化されていない。好ましくは、遺伝子組み換えゼラチンはテロペプタイドを有さない。好ましくは、遺伝子組み換えゼラチンは天然コラーゲンをコードする核酸により調製された実質的に純粋なコラーゲン用材料である。本発明で用いる遺伝子組み換えゼラチンとして特に好ましくは、1配列番号1に記載のアミノ酸配列;又は2配列番号1に記載のアミノ酸配列と80以上さらに好ましくは90以上、最も好ましくは95以上の相同性を有し、生体親和性を有するアミノ酸配列;を有する遺伝子組み換えゼラチンである。本発明で用いる遺伝子組み換えゼラチンは、当業者に公知の遺伝子組み換え技術によって製造することができ、例えばEP1014176A2、US6992172、WO200485473、WO2008103041等に記載の方法に準じて製造することができる。具体的には、所定の遺伝子組み換えゼラチンのアミノ酸配列をコードする遺伝子を取得し、これを発現ベクターに組み込んで、組み換え発現ベクターを作製し、これを適当な宿主に導入して形質転換体を作製する。得られた形質転換体を適当な培地で培養することにより、遺伝子組み換えゼラチンが産生されるので、培養物から産生された遺伝子組み換えゼラチンを回収することにより、本発明で用いる遺伝子組み換えゼラチンを調製することができる。1-4生体親和性を有する高分子ブロック本発明では、上記した生体親和性を有する高分子からなるブロック塊を使用する。高分子ブロックの製造方法は特に限定されないが、例えば、高分子からなる固形物を粉砕機ニューパワーミルなどを用いて粉砕した後に、ふるいでサイズ分けすることにより所望のサイズのブロックを取得することができる。高分子ブロックの大きさは、好ましくは1μm以上700μm以下であり、より好ましくは10μm以上700μm以下であり、さらに好ましくは10μm以上300μm以下であり、さらに好ましくは20μm以上150μm以下であり、特に好ましくは25μm以上106μm以下である。また、高分子ブロックは上記のサイズを太さとするような、700μm以上の長いひも状であってもよく、さらには上記のサイズを厚さとするようなシート状、ゲル状であってもよい。上記好適な範囲とすることにより、より構造体中で細胞がより均一に存在することができる。2細胞本発明で用いる細胞は、本発明の細胞構造体の目的に応じて適宜選択することができ、その種類は特に限定されない。また、細胞は、細胞構造体の使用目的に応じて、1種でも、複数種の組合せて用いてもよい。使用する細胞として、好ましくは、動物細胞であり、より好ましくは脊椎動物由来細胞、特に好ましくはヒト由来細胞である。脊椎動物由来細胞特に、ヒト由来細胞の種類は、万能細胞、体性幹細胞、前駆細胞、又は成熟細胞の何れでもよい。万能細胞としては、例えば、ES細胞、GS細胞、又はiPS細胞を使用することができる。体性幹細胞としては、例えば、間葉系幹細胞MSC、造血幹細胞、羊膜細胞、臍帯血細胞、骨髄由来細胞、心筋幹細胞、脂肪由来幹細胞、又は神経幹細胞を使用することができる。前駆細胞及び成熟細胞としては、例えば、皮膚、真皮、表皮、筋肉、心筋、神経、骨、軟骨、内皮、脳、上皮、心臓、腎臓、肝臓、膵臓、脾臓、口腔内、角膜、骨髄、臍帯血、羊膜、又は毛に由来する細胞を使用することができる。ヒト由来細胞としては、例えば、ES細胞、iPS細胞、MSC、軟骨細胞、骨芽細胞、骨芽前駆細胞、間充織細胞、筋芽細胞、心筋細胞、心筋芽細胞、神経細胞、肝細胞、ベータ細胞、線維芽細胞、角膜内皮細胞、血管内皮細胞、角膜上皮細胞、羊膜細胞、臍帯血細胞、骨髄由来細胞、又は造血幹細胞を使用することができる。また、細胞の由来は、自家細胞又は他家細胞の何れでも構わない。複数種の細胞を組合せて使用する場合には、例えば、血管系の細胞と他の細胞が挙がられる。血管系の細胞とは、血管内皮細胞、血管内皮前駆細胞、造血幹細胞等がある。血管系の細胞と他の細胞とを組合せることにより、血管を本発明の細胞構造体に誘導することができ、栄養、酸素等を供給することができる。3細胞構造体本発明においては、上記した生体親和性を有する高分子ブロックと上記した細胞とを用いて、複数個の細胞間の隙間に複数個の該高分子ブロックをモザイク状に3次元的に配置させることによって、外部から細胞3次元構造体の内部への栄養送達を可能とし、十分な厚みを有した細胞3次元構造体を形成することに成功した。同時に、細胞3次元構造体の外周部に存在する細胞の働きによって、細胞3次元構造体同士の自然融合を可能とした。本発明の細胞構造体の厚さ又は直径は、本明細書中後記する方法により所望の厚さとすることが出来るが、下限としては、215μm以上であることが好ましく、400μm以上がさらに好ましく、730μm以上であることが最も好ましい。厚さ又は直径の上限は特に限定されないが、使用上の一般的な範囲としては3cm以下が好ましく、2cm以下がより好ましく、1cm以下であることが更に好ましい。また、細胞構造体の厚さ又は直径の範囲として、好ましくは、400μm以上3cm以下、より好ましくは500μm以上2cm以下、更に好ましくは720μm以上1cm以下である。なお、実施例では720μm以上の細胞構造体図3を作製したのち、融合させて813μmの厚みを持つ細胞構造体を作製図10した。本発明の細胞構造体は、高分子ブロックからなる領域と細胞からなる領域がモザイク状に配置されていることを特徴とする。尚、本明細書中における細胞構造体の厚さ又は直径とは、以下のことを示すものとする。細胞構造体中のある一点Aを選択した際に、その点Aを通る直線の内で、細胞構造体外界からの距離が最短になるように細胞構造体を分断する線分の長さを線分Aとする。細胞構造体中でその線分Aが最長となる点Aを選択し、その際の線分Aの長さのことを細胞構造体の厚さ又は直径とする。本発明の細胞構造体は、十分な厚みを有することができ、また、細胞が均一に存在できることから、細胞移植、細胞培養および毒性評価等に好適に用いることができる。これらの用途に本発明の細胞構造体を使用する際には、本発明の細胞構造体の厚さ又は直径は前記範囲とすることが好ましい。また、後述する本発明の細胞構造体の製造方法での融合前の細胞構造体、または第二の高分子ブロック添加前の細胞構造体として、本発明の細胞構造体を使用する場合には、細胞構造体の厚さ又は直径の範囲として、好ましくは、10μm以上1cm以下、より好ましくは10μm以上2000μm以下、更に好ましくは15μm以上1500μm以下、最も好ましくは、20μm以上1300μm以下である。本発明の細胞構造体は、細胞と高分子ブロックの比率は特に限定されないが、好ましくは細胞1個当りの高分子ブロックの比率が0.0000001μg以上1.0μg以下であることが好ましく、さらに好ましくは0.000001μg以上0.1μg以下、より好ましくは0.00001μg以上0.01μg以下、最も好ましくは0.00002μg以上0.006μg以下である。前記範囲とするこのより、より細胞を均一に存在させることができる。また、下限を上記範囲とすることにより、上記用途に使用した際に細胞の効果を発揮することができ、上限を上記範囲とすることにより、任意で存在する高分子ブロック中の成分を細胞に供給できる。ここで、高分子ブロック中の成分は特に制限されないが、後述する培地に含まれる成分が挙げられる。4細胞構造体の製造方法本発明の細胞構造体は、生体親和性を有した高分子材料からなる塊ブロックと、細胞とを交互に配置することにより製造できる。製造方法は特に限定されないが、好ましくは高分子ブロックを形成したのち、細胞を播種する方法である。具体的には、生体親和性を有する高分子ブロックと細胞含有培養液との混合物をインキュベートすることによって、本発明の細胞構造体を製造することができる。例えば、容器中、容器に保持される液体中で、細胞と、予め作製した生体親和性を有する高分子ブロックをモザイク状に配置する。配置の手段としては、自然凝集、自然落下、遠心、攪拌を用いることで、細胞と生体親和性基材からなるモザイク状の配列形成を、促進、制御することが好ましい。用いられる容器としては、細胞低接着性材料、細胞非接着性材料からなる容器が好ましく、より好ましくはポリスチレン、ポリプロピレン、ポリエチレン、ガラス、ポリカーボネート、ポリエチレンテレフタレートからなる容器である。容器底面の形状は平底型、U字型、V字型であることが好ましい。上記の方法で得られたモザイク状細胞構造体は、例えば、1別々に調整したモザイク状細胞塊同士を融合させる、又は2分化培地又は増殖培地下でボリュームアップさせる、などの方法により所望の大きさの細胞構造体を製造することができる。融合の方法、ボリュームアップの方法は特に限定されない。例えば、生体親和性を有する高分子ブロックと細胞含有培養液との混合物をインキュベートする工程において、培地を分化培地又は増殖培地に交換することによって、細胞構造体をボリュームアップさせることができる。好ましくは、生体親和性を有する高分子ブロックと細胞含有培養液との混合物をインキュベートする工程において、生体親和性を有する高分子ブロックをさらに添加することによって、所望の大きさの細胞構造体であって、細胞構造体中に細胞が均一に存在する細胞構造体を製造することができる。前記別々に調整したモザイク状細胞塊同士を融合させる方法とは、具体的には、生体親和性を有する、複数個の高分子ブロックと、複数個の細胞とを含み、該複数の細胞により形成される複数個の隙間の一部または全部に、一または複数個の前記高分子ブロックが配置されている細胞構造体を複数個融合させる工程を含む、細胞構造体の製造方法である。本発明の細胞構造体の製造方法にかかる生体親和性を有する高分子ブロック種類、大きさ等、細胞、細胞間の隙間、得られる細胞構造体大きさ等、細胞と高分子ブロックの比率等の好適な範囲は、前記本発明の細胞構造体に関する好適な範囲と同様である。また、前記融合前の各細胞構造体の厚さ又は直径が10μm以上1cm以下であり、前記融合後の厚さ又は直径が400μm以上3cm以下であることが好ましい。ここで、前記融合前の各細胞構造体の厚さ又は直径として、より好ましくは10μm以上2000μm以下、更に好ましくは15μm以上1500μm以下、最も好ましくは、20μm以上1300μm以下であり、また、記融合後の厚さ又は直径の範囲として、より好ましくは500μm以上2cm以下、更に好ましくは720μm以上1cm以下である。前述した生体親和性を有する高分子ブロックをさらに添加することによって、所望の大きさの細胞構造体を製造する方法とは、具体的には、生体親和性を有する、複数個の第一の高分子ブロックと、複数個の細胞とを含み、該複数の細胞により形成される複数個の隙間の一部または全部に、一または複数個の前記高分子ブロックが配置されている細胞構造体に、更に、第二の高分子ブロックを添加しインキュベートする工程を含む細胞構造体の製造方法である。ここで、生体親和性を有する高分子ブロック種類、大きさ等、細胞、細胞間の隙間、得られる細胞構造体大きさ等、細胞と高分子ブロックの比率等の好適な範囲は、前記本発明の細胞構造体に関する好適な範囲と同様である。ここで、融合させたい細胞構造体同士は、0以上50μm以下の距離に設置することが好ましく、より好ましくは、0以上20μm以下、更に好ましくは0以上5μm以下の距離である。細胞構造体同士を融合させる際、細胞の増殖伸展によって細胞あるいは細胞が産生する基質が接着剤の役割を果たし、接合させることが考えられ、上記範囲とすることにより、細胞構造体同士の接着が容易となる。本発明にかかる第一の高分子ブロックの大きさは、好ましくは1μm以上700μm以下であり、より好ましくは10μm以上700μm以下であり、さらに好ましくは10μm以上300μm以下であり、さらに好ましくは20μm以上150μm以下であり、特に好ましくは25μm以上106μm以下である。また、本発明にかかる第二の高分子ブロックの大きさも好ましくは1μm以上700μm以下であり、より好ましくは10μm以上700μm以下であり、さらに好ましくは10μm以上300μm以下であり、さらに好ましくは20μm以上150μm以下であり、特に好ましくは25μm以上106μm以下である。本発明の細胞構造体の製造方法により得られる細胞構造体の厚さ又は直径の範囲として、好ましくは、400μm以上3cm以下、より好ましくは500μm以上2cm以下、更に好ましくは720μm以上1cm以下である。細胞構造体に、更に、第二の高分子ブロックを添加しインキュベートする際の、第二の高分子ブロックの添加するペースは、使用する細胞の増殖の速度に合わせて、適宜、選択することが好ましい。具体的には、第二の高分子ブロックを添加するペースが早いと細胞が細胞構造体の外側へと移動し、細胞の均一性が低くなり、添加のペースが遅いと、細胞の割合が多くなる箇所ができ、細胞の均一性が低くなるため、使用する細胞の増殖速度を考慮し、選択する。前記本発明の細胞構造体の製造方法により製造された細胞構造体は、所望の形状サイズを形成させることができ、十分な厚みを有することができ、また、細胞が均一に存在できることから、細胞移植、細胞培養および毒性評価等に好適に用いることができる。以下の実施例により本発明をさらに具体的に説明するが、本発明は実施例によって限定されるものではない。実施例1:遺伝子組み換えゼラチン遺伝子組み換えゼラチンリコンビナントゼラチンとして以下記載のCBE3を用意したWO2008103041に記載。CBE3分子量:516kD構造:GAP633Gアミノ酸数:571個RGD配列:12個イミノ酸含量:33ほぼ100のアミノ酸がGXYの繰り返し構造である。CBE3のアミノ酸配列には、セリン、スレオニン、アスパラギン、チロシン及びシステインは含まれていない。CBE3はERGD配列を有している。等電点:934、GRAVY値:0682、1/IOB値:0323アミノ酸配列配列表の配列番号1WO2008/103041号公報の配列番号3と同じ。但し末尾のXはPに修正GAP3G実施例2:リコンビナントゼラチンμブロックの作製基材ブロックとして、リコンビナントゼラチンCBE3を用いて、不定形のμブロックを作製した。1000mgのリコンビナントゼラチンを9448μLの超純水に溶解し、1NHClを152μL添加後、終濃度1.0となるように、25グルタルアルデヒドを400μL添加し、50°Cで3時間反応させ、架橋ゼラチンゲルを作製した。この架橋ゼラチンゲルを、1Lの0.2Mグリシン溶液へ浸漬し、40°C2時間振とうさせた。その後、架橋ゼラチンゲルを、5Lの超純水中で1時間振とう洗浄、超純水を新しい物へ置換し、再び洗浄1時間、を繰り返し、計6回洗浄した。洗浄後の架橋ゼラチンゲルを、-80°Cで5時間凍結させた後、凍結乾燥機EYELA、FDU-1000で凍結乾燥を行った。得られた凍結乾燥体を、ニューパワーミル大阪ケミカル、ニューパワーミルPM-2005で粉砕した。粉砕は、最大回転数で1分間×5回、計5分間の粉砕で行った。得られた粉砕物について、ステンレス製ふるいでサイズ分けし、25~53μm及び53~106μmのリコンビナントゼラチンμブロックを得た。実施例3:天然ゼラチンμブロックの作製基材ブロックとして、天然ゼラチンNippi、ニッピゼラチンハイグレードゼラチンAPATを用いて、不定形のμブロックを作製した。1000mgの天然ゼラチンを9448μLの超純水に溶解し、1NHClを152μL添加後、終濃度1.0となるように、25グルタルアルデヒドを400μL添加し、50°Cで3時間反応させ、架橋ゼラチンゲルを作製した。この架橋ゼラチンゲルを、1Lの0.2Mグリシン溶液へ浸漬し、40°C2時間振とうさせた。その後、架橋ゼラチンゲルを、5Lの超純水中で1時間振とう洗浄、超純水を新しい物へ置換し、再び洗浄1時間、を繰り返し、計6回洗浄した。洗浄後の架橋ゼラチンゲルを、-80°Cで5時間凍結させた後、凍結乾燥機EYELA、FDU-1000で凍結乾燥を行った。得られた凍結乾燥体を、ニューパワーミル大阪ケミカル、ニューパワーミルPM-2005で粉砕した。粉砕は、最大回転数で1分間×5回、計5分間の粉砕で行った。得られた粉砕物について、ステンレス製ふるいでサイズ分けし、25~53μm及び53~106μmの天然ゼラチンμブロックを得た。実施例4:リコンビナントゼラチンμブロックを用いたモザイク細胞塊の作製ヒト骨髄由来間葉系幹細胞hMSCを増殖培地タカラバイオ:MSCGMCDTMBulletKitTMにて50万cells/mLに調整し、実施例2で作製したリコンビナントゼラチンμブロックを1.0mg/mLとなるように加えた後、100μLをスミロンセルタイトX96Uプレート住友ベークライト、底がU字型に播種し、18時間静置し、直径1mm程度の球状の、リコンビナントゼラチンμブロックとhMSC細胞からなるモザイク細胞塊を作製した細胞1個当たり0.002μgの高分子ブロック。その後、培地を軟骨分化培地タカラバイオ:hMSCDifferentiationBulletKitTMChondrogenic、TGFβ3200μLへ置換した。Day7で、直径=厚さが1.54mmの球状に、モザイク細胞塊が形成された図1。なお、本モザイク細胞塊は、U字型のプレート中で作製するため、球状に作製されている。培地交換は、Day3、7、10、14、17、21で行う。実施例5:天然ゼラチンμブロックを用いたモザイク細胞塊の作製ヒト骨髄由来間葉系幹細胞hMSCを増殖培地タカラバイオ:MSCGMCDTMBulletKitTMにて50万cells/mLに調整し、実施例3で作製した天然ゼラチンμブロックを1.0mg/mLとなるように加えた後、100μLをスミロンセルタイトX96Uプレートに播種し、18時間静置し、直径1mm程度の球状の、天然ゼラチンμブロックとhMSC細胞からなるモザイク細胞塊を作製した細胞1個当たり0.002μgの高分子ブロック。その後、培地を軟骨分化培地タカラバイオ:hMSCDifferentiationBulletKitTMChondrogenic、TGFβ3200μLへ置換した。Day7で、直径=厚さ1.34mmの球状に、モザイク細胞塊が形勢された図2。尚、本モザイク細胞塊は、U字型のプレート中で作製するため、球状に作製されている。ヒト骨髄由来間葉系幹細胞hMSCを増殖培地タカラバイオ:MSCGMCDTMBulletKitTMにて50万cells/mLに調整し、実施例3で作製した天然ゼラチンμブロックを最終濃度で0.005mg/mL、0.01mg/mL、0.1mg/mL、0.2mg/mL、1.0mg/mL、2.0mg/mLとなるように条件を振って作成した後、100μLをスミロンセルタイトX96Uプレートに播種し、18時間静置し、直径1mm弱球状のモザイク細胞塊が作製できた細胞1個当たり0.00001、0.0002、0.0004、0.002、0.004μgの高分子ブロック。実施例6:標本解析実施例4で作製したリコンビナントゼラチンμブロックを用いたモザイク細胞塊について、組織切片を作製した。実施例4で作製した培地中のモザイク細胞塊に対して、培地を除去後、200μLのPBSを加え洗浄し、PBSを除去した。この洗浄工程を2回繰り返した後、洗浄したモザイク細胞塊を10ホルマリンに浸漬し、2日間ホルマリン固定を行った。その後、パラフィンで包埋し、組織切片を作製した。切片はHE染色ヘマトキシリンエオシン染色し、細胞とゼラチンμブロックの状態を解析した。結果を図3、図4及び図5に示す。これにより、ゼラチンμブロックと、細胞がモザイク状に配置された3次元構造体が作製されていること、さらに細胞が正常な状態でモザイク細胞塊中に存在していることが確認できた。また、この断面切片から、少なくとも厚さ720μm以上のモザイク細胞塊が作製できていることが示された。実施例7:モザイク細胞塊の融合実施例4で作製したモザイク細胞塊が、融合可能であるか、つまりモザイク細胞塊を並べていくことで、自然融合し、より大きな3次構造体を形成できるかについて実施した。実施例4で作製した6日目のモザイク細胞塊2個、3個、及び4個をスミロンセルタイトX96Uプレート中で並べ、5日間培養を行った。その結果、モザイク細胞塊同士の間を、外周部に配された細胞が結合させることで、モザイク細胞塊が自然に融合することが明らかになった。図6に実体顕微鏡で撮像した写真を示す。融合開始日Day6と記載のモザイク細胞塊では、モザイク細胞塊同士が隣り合って配置されているだけであるが、融合開始から5日目Dya11と記載には、モザイク細胞塊間に新たな層が形成され、融合されていっている様子がわかる。また、図7,8,9,10,11には、該融合モザイク細胞塊の断面について、組織切片を作製し、HE染色した結果を示す固定は10ホルマリン、包埋はパラフィン包埋。細胞と、細胞により産生された細胞外基質で、モザイク細胞塊間に融合層が形成されており、モザイク細胞塊同士を融合、結合していることがわかる。これにより、本発明にて作製されるモザイク細胞塊は、自然に融合可能であり、融合させることで、より大きな構造体を形成できることが示された。従って、本発明を用いることで、厚さを有した細胞シート状に作製することも、より立体的な3次元構造体を作製することも可能であることが分かる。実施例8:リコンビナントゼラチンμブロックを用いた、増殖培地下のモザイク細胞塊作製ヒト骨髄由来間葉系幹細胞hMSCを増殖培地タカラバイオ:MSCGMCDTMBulletKitTMにて50万cells/mLに調整し、実施例2で作製したリコンビナントゼラチンμブロックを1.0mg/mLとなるように加えた後、100μLをスミロンセルタイトX96Uプレートに播種し、18時間静置し、直径1mm球状のモザイク細胞塊を作製した細胞1個当たり0.002μgの高分子ブロック。その後、培地を200μLへ増やし、3日毎に培地を交換し培養した。Day7で、直径=厚さ1.34mmの球状に、モザイク細胞塊が形成された尚、本モザイク細胞塊は、U字型のプレート中で作製するため、球状に作製される。Day7のモザイク細胞塊の切片写真を図16、17に示す。この断面切片上で、厚さの薄い箇所でも、少なくとも624μm以上の厚みを達成していることが分かる。実施例9:モザイク細胞塊のボリュームアップ増殖培地下で実施例8で作製した3日目Day3のモザイク細胞塊について、培地交換の際、実施例2で作製した0.1mgのリコンビナントゼラチンμブロックを、増殖培地タカラバイオ:MSCGMCDTMBulletKitTMに懸濁して添加した。以後、Day7,10,14,17,21の培地交換に合わせ、0.1mgずつのリコンビナントゼラチンμブロックを添加していった。このモザイク細胞塊を実体顕微鏡で観察した際の径異なる2つの直径の平均として算出、及び撮像したモザイク細胞塊の面積、計算上の体積上記で求めた直径から43πr3で計算、それぞれについての経時変化を図12,13,14,15に示した。その結果、最終的にDay21で平均直径=厚さ3.41mmの球状に形成された。これにより、少なくともサイズ3.41mmまでの大きさのモザイク細胞塊を作製可能であることが分かる。また、本手法によるボリュームアップを続けることで、そのサイズを大きくすることが可能であることが分かる。この時の組織切片HE染色を図18,19に示した。細胞とリコンビナントゼラチンμブロックがモザイク状に配置されていることが分かる。また、モザイク細胞塊は3mm大であり、標本として小さいため、球の中央部をうまく断面にすることは困難を極めた。従って、切片として、球の最深部分を得られていないにも関わらず、当該検体のこの切片を採取した部分でも、厚みは、少なくとも1.17mmはあることが窺える。Day7,10,14,17,21の培地交換の際、ゼラチンμブロックを追加せず、培養したものでは、図12,13,14で示されるように直径が変わらない。ゼラチンμブロックを追加せず、培養したものでは、モザイク細胞塊の最外郭層に、増殖した細胞によって、細胞と細胞が産生した細胞外基質のみの層状構造が形成される。それにより、その細胞と産生細胞外基質の層によって、栄養の拡散が阻まれる状態を形成してしまい、それ以上に細胞が増殖球が大きくなるすることができなくなるためである。一方で、培地交換に合せて、随時ゼラチンμブロックを追加していった場合、ゼラチンμブロックが、増殖した細胞とともに常にモザイク状にはめ込まれることで、細胞が増殖しても、細胞とゼラチンμブロックからなるモザイク構造を維持し続けることが可能となる。それによって、ゼラチンμブロックで提供される栄養の供給経路が常に確保され、細胞と産生された細胞外基質で形成されてしまう外殻層が生成されず、モザイク細胞塊は大きくなれるのである。実施例10:モザイク細胞塊のボリュームアップ軟骨分化培地下で実施例4で作製した3日目Day3のモザイク細胞塊について、培地交換の際、実施例2で作製した0.1mgリコンビナントゼラチンμブロック0.1mgを、軟骨分化培地タカラバイオ:hMSCDifferentiationBulletKitTMChondrogenic、TGFβ3に懸濁して添加した。以後、Day7,10,14,17,21の培地交換に合わせ、0.1mgずつのリコンビナントゼラチンμブロックを添加していった。このモザイク細胞塊を実体顕微鏡で観察した際の径異なる2つの直径の平均として算出、及び撮像したモザイク細胞塊の面積、計算上の体積上記で求めた直径から43πr3で計算、それぞれについての経時変化を図12,13,14,15に示した。結果、最終的にDay21で平均直径=厚さ2.05mmの球状に形成された。これにより、少なくともサイズ2.05mmまでの大きさのモザイク細胞塊を作製可能であることが分かる。また、本手法によるボリュームアップを続けることで、そのサイズを大きくすることが可能であることが分かる。この時の組織切片HE染色を図20,21に示した。細胞とリコンビナントゼラチンμブロックがモザイク状に配置されていることが分かる。また、モザイク細胞塊は2mm大であり、標本として小さいため、球の中央部をうまく断面にすることは困難を極めた。従って、切片として、球の最深部分を得られていないにも関わらず、当該検体のこの切片を採取した部分でも、厚みは、少なくとも897μmはあることが窺える。Day7,10,14,17,21の培地交換の際、ゼラチンμブロックを追加せず、培養したものでは、図12,13,14で示されるように直径が変わらない。ゼラチンμブロックを追加せず、培養したものでは、モザイク細胞塊の最外郭層に、増殖した細胞によって、細胞と細胞が産生した細胞外基質のみの層状構造が形成される。それにより、その細胞と産生細胞外基質の層によって、栄養の拡散が阻まれる状態を形成してしまい、それ以上に細胞が増殖球が大きくなるすることが出来なくなる為である。一方で、培地交換に合せて、随時ゼラチンμブロックを追加していった場合、ゼラチンμブロックが、増殖した細胞とともに常にモザイク状にはめ込まれることで、細胞が増殖しても、細胞とゼラチンμブロックからなるモザイク構造を維持し続けることが可能となる。それによって、ゼラチンμブロックで提供される栄養の供給経路が常に確保され、細胞と産生された細胞外基質で形成されてしまう外殻層が生成されず、モザイク細胞塊は大きくなれるのである。実施例11:モザイク細胞塊のGAG産生量の定量経時変化実施例4及び実施例5で作製したモザイク細胞塊hMSC細胞リコンビナントゼラチン、hMSC細胞天然ゼラチン、及び細胞のみで作製した細胞塊実施例4と同様の手法で、ゼラチンブロックを入れずに作製した、について、モザイク細胞塊中のグリコサミノグリカン量を定量した。測定は、FarndaleetalImprovedquantitationandsulphatedglycosaminoglycansbyuseofdimethylmethyleneblueBiochimicaetBiophysicaActa883173177のDimetylmethylenebluedyeを用いる方法で行い、試薬は硫酸化GAG定量キット生化学バイオビジネスを用いた。530nmの吸光を測定し、定量した。図21に示すように、該手法によって、特徴的な吸収ピークが525-530nmに見られることを確認している。経時でGAG量を定量した結果を図22のグラフに示した。結果、ゼラチンμブロックを入れずに作製した細胞塊では、産生するグリコサミノグリカンGAG量が低いのに対して、天然ゼラチンμブロックを入れて作製したモザイク細胞塊、及びリコンビナントゼラチンμブロックを入れて作製したモザイク細胞塊については、産生するGAG量が極めて高かった。これによって、実施例4及び実施例5で作製したモザイク細胞塊では、軟骨分化が促進されていること、また作製したモザイク細胞塊が細胞としての機能を有していることGAG産生能を有していることが確認出来た。さらに、天然ゼラチンμブロックを入れて作製したモザイク細胞塊よりも、リコンビナントゼラチンμブロックを入れて作製したモザイク細胞塊では、産生するGAG量が有意に高かった。これによって、リコンビナントゼラチンμブロックを入れて作製したモザイク細胞塊は、天然ゼラチンμブロックよりも高い細胞活性、基質産生活性を維持できることが分かり、天然ゼラチンでは不可能であった基質量の産生が、リコンビナントゼラチンを用いることで達成出来ることが示された。実施例12:モザイク細胞塊のATP定量各モザイク細胞塊中の細胞が産生保持しているATPアデノシン三リン酸量を定量した。ATPは生物全般のエネルギー源として知られ、ATP合成量保持量を定量することで、細胞の代謝活性の状態、活動状態を知ることができる。測定には、CellTiter-GloPromega社を用いた。比較は、実施例4及び実施例5で作製したモザイク細胞塊hMSC細胞リコンビナントゼラチン、hMSC細胞天然ゼラチン、及び細胞のみで作製した細胞塊実施例4と同様の手法で、ゼラチンブロックを入れずに作製した、について、ともにDay7のもので、CellTiter-Gloを用いて、各モザイク細胞塊中のATP量を定量した。結果を、図23に示した。これにより、ゼラチンμブロックを用いて作製したモザイク細胞塊では、細胞のみで作製された細胞塊よりも有意にATP産生保持量が高いことが分かったp<0.01。これは、ゼラチンブロックがモザイク状にはめ込まれることによって、ゼラチンブロックによるモザイク細胞塊中への栄養供給経路が提供され、細胞のみの塊よりも、細胞の代謝活性の高い状態が維持されることを示唆している。さらに、天然ゼラチンμブロックを入れて作製したモザイク細胞塊よりも、リコンビナントゼラチンμブロックを入れて作製したモザイク細胞塊では、ATP産生保持量が有意に高いことが分かった。これによって、リコンビナントゼラチンμブロックを入れて作製したモザイク細胞塊は、天然ゼラチンμブロックよりも高い細胞生存、内部でも細胞が生きていることが分かった。天然ゼラチンでは不可能であった細胞の生存向上が、リコンビナントゼラチンを用いることで達成出来ることが示された。実施例13:PLGAμブロックの作製PLGA乳酸グリコール酸共重合体:Wako、PLGA75200.3gをジクロロメタン3mLに溶解した。概PLGA溶解液を乾燥機EYELA、FDU-1000にて真空乾燥し、PLGAの乾燥体を得た。PLGA乾燥体を、ニューパワーミル大阪ケミカル、ニューパワーミルPM-2005で粉砕した。粉砕は、最大回転数で10秒×20回の粉砕で行った。得られた粉砕物について、ステンレス製ふるいでサイズ分けし、25~53μm及び53~106μmのPLGAμブロックを得た。PLGA:1/IOB値:00552実施例14:PLGAを用いたモザイク細胞塊の作製ヒト骨髄由来間葉系幹細胞hMSCを増殖培地タカラバイオ:MSCGMCDTMBulletKitTMにて50万cells/mLに調整し、実施例13で作製したPLGAμブロックを加えた最終濃度で0.1mg/mL、0.2mg/mL、1.0mg/mL、2.0mg/mLとなるように条件を振って作成した後、100μLをスミロンセルタイトX96Uプレートに播種し、18時間静置し、直径1mm弱球状のモザイク細胞塊を作製した細胞1個当たり0.0002、0.0004、0.002、0.004μgの高分子ブロック。その後、培地を200μLへ増やし、3日毎に培地を交換し培養した。尚、本モザイク細胞塊は、U字型のプレート中で作製するため、球状に作製される。Day2のPLGAモザイク細胞塊の実体顕微鏡写真を図24に示す。実施例15:アガロースμブロックの作製アガロース粉末5gを超純水100mLに加え、電子レンジを用いて加熱し溶解した。得られた5アガロース溶解液を常温に戻すことで固形物にして、-80°Cで5時間凍結させた後、凍結乾燥機EYELA、FDU-1000で凍結乾燥を行うことで、アガロースの凍結乾燥体を得た。アガロース凍結乾燥体を、ニューパワーミル大阪ケミカル、ニューパワーミルPM-2005で粉砕した。粉砕は、最大回転数で10秒×20回の粉砕で行った。得られた粉砕物について、ステンレス製ふるいでサイズ分けし、25~53μm及び53~106μmのアガロースμブロックを得た。IOB値:318実施例16:アガロースを用いたモザイク細胞塊の作製ヒト骨髄由来間葉系幹細胞hMSCを増殖培地タカラバイオ:MSCGMCDTMBulletKitTMにて50万cells/mLに調整し、実施例15で作製したアガロースμブロックを加えた最終濃度で0.1mg/mL、1.0mg/mLとなるように条件を振って作成した後、100μLをスミロンセルタイトX96Uプレートに播種し、18時間静置し、直径1mm弱球状のモザイク細胞塊を作製した細胞1個当たり0.0002、0.002μgの高分子ブロック。その後、培地を200μLへ増やし、3日毎に培地を交換し培養した。尚、本モザイク細胞塊は、U字型のプレート中で作製するため、球状に作製された。実施例17:心筋細胞を用いたモザイク細胞塊の作製新生児SDラット心筋細胞rCMCを心筋細胞用培地PrimaryCellCoLtd:CMCM心筋細胞用培養メディウムにて50万cells/mLに調整し、実施例2で作製したリコンビナントゼラチンμブロックを0.5、1.0、3.0mg/mLとなるように加えた後、それぞれ100μLをスミロンセルタイトX96Uプレート住友ベークライト、底がU字型に播種し、18時間静置し、直径1~2mm程度のリコンビナントゼラチンμブロックとrCMC細胞からなるモザイク細胞塊を作製した細胞1個当たり0.001、0.002、0.006μgの高分子ブロック。培地交換は、Day3、7、10、14、17、21で行った。Day1、Day3の段階で既にrCMCモザイク細胞塊は構造体全体として同期拍動していることが確認できた図25。明細書中では、動画を示すことが困難であるため、図25では、動画から0.2秒後の同一スポットを静止画像としてキャプチャ撮影した画像である。三角形で印を付けた部位を見ると二枚の絵で全体が動いていることが分かる。これにより、心筋細胞を用いても本発明の細胞3次元構造体モザイク細胞塊が形成可能であることが確認出来たとともに、心筋細胞を用いたモザイク細胞塊においては、構造体全体として同期拍動するような細胞構造体が得られることが証明された。実施例18:GFP発現HUVECヒト臍帯静脈内皮細胞を用いたモザイク細胞塊の作製GFPを発現しているヒト臍帯静脈内皮細胞GFP-HUVEC:Angio-Proteomie社を内皮細胞用培地クラボウ:Medium200S、LSGS、抗菌剤GA溶液にて50万cells/mL調整し、実施例2で作製したリコンビナントゼラチンμブロックを0.3、1.0、3.0mg/mLとなるように加えた後、それぞれ100μLをスミロンセルタイトX96Uプレート住友ベークライト、底がU字型に播種した細胞1個当たり0.0006、0.002、0.006μgの高分子ブロック。また、同様にして、細胞を150万cells/mLに調整し、実施例2で作製したリコンビナントゼラチンμブロックを1.0mg/mLとなるように加えた後、100μL、200μLをスミロンセルタイトX96Uプレート住友ベークライト、底がU字型に播種したものも作製した。全てについて、18時間静置し、直径1~2mm程度のリコンビナントゼラチンμブロックとGFP-HUVEC細胞からなるモザイク細胞塊を作製した。培地交換は、Day3、7、10、14、17、21で行った。図26には、5万cells0.03mgのモザイク細胞塊と、30万cells0.2mgのモザイク細胞塊の顕微鏡写真、及び蛍光顕微鏡写真を示している。GFP-HUVEC細胞はGFPの蛍光を発する為、蛍光顕微鏡によりモザイク細胞塊中の分布が理解しやすい。これによって、本発明の細胞3次元構造体モザイク細胞塊は血管内皮細胞を用いても作製可能であることが証明された。また、本発明の細胞構造体モザイク細胞塊については、間葉系幹細胞、心筋細胞、血管内皮細胞といった多様な細胞で形成可能であることが実証された。同時に、リコンビナントゼラチンブロック、動物ゼラチンブロック、PLGAブロック、アガロースブロックといった多様な高分子ブロックを用いて形成可能であることも示された。これにより、多様な細胞種と多様な高分子ブロック種において、本発明の細胞3次元構造体モザイク細胞塊が形成可能であることが証明された。"