1イカリソウの葉を用意し、水を添加し、浸漬し、水抽出を行なって水抽出物溶液を得て;2ステップ1で得られた水抽出物溶液をエタノール沈殿に供し、沈殿部を採取し、水を添加して溶かし、遠心分離し、上清を採取し、透析を実行し;3透析によって得られた透析物を採取し、凍結乾燥させてイカリソウの多糖を得る、方法によって得られる、イカリソウの多糖。以下の1~13、1ステップ1イカリソウの葉が、抽出されていないイカリソウの葉、または有機溶媒石油、酢酸エチル、クロロホルム、エチルエーテル、nヘキサン、シクロヘキサン、nブタノール、エタノール、メタノールなどを用いた抽出後に得られる残りの葉である;2ステップ1では、水が蒸留水または脱イオン水である;3ステップ1では、水抽出の温度が4~60°C、好ましくは20~60°C、より好ましくは20~50°Cである;4ステップ1では、抽出後に得られるイカリソウの葉に対して同じ条件下で抽出が1回以上実行され、水抽出物溶液が混合される;5ステップ1では、水の量が、イカリソウの量lkgの5~20倍である;6ステップ1では、抽出の間、撹拌される;7ステップ1では、得られた水抽出物溶液が減圧下で50°C~55°Cで濃縮され、濃縮された水抽出物溶液が得られる;8ステップ2では、エタノール沈殿の条件が、エタノール沈殿の後にエタノールの最終濃度が60~80例えば70~75になるというものであり;好ましくは、エタノール沈殿の時間は12時間超例えば48~72時間である;9ステップ2では、エタノール沈殿の後の遠心分離によって得られた沈殿物に対してさらに1回以上エタノール沈殿が実施され、上清が混合される;10ステップ2では、透析に用いる透析バッグが、分子量カットオフが1000超である;11ステップ2では、水道水および/または蒸留水を用いて透析が行われる;12ステップ2では、透析が1回以上実施される;13ステップ3では、得られた透析物が減圧下で50°C~55°Cにて濃縮され、凍結乾燥される、のうちの任意の1つ以上を特徴とする、請求項1に記載のイカリソウの多糖。1糖類の含量がグルコースで計算して25~45、例えば3560であり、グルクロン酸の含量がガラクトースウロン酸で計算して5~20、例えば753であり;そして/または、2図1及び図2に示される特徴を有する、ことを特徴とする、イカリソウの多糖又は請求項1または2に記載のイカリソウの多糖。025モルlのNaHCO3を用いたDEAEセルロースカラムクロマトグラフィによって、請求項1~3のいずれか1項に記載のイカリソウの多糖から得られた溶離部であり、硫酸フェノール着色によって490nmの波長に吸収を有する、イカリソウの酸性多糖画分。ラムノース、フコース、アラビノース、キシロース、マンノース、グルコース、ガラクトース、及びガラクトースウロン酸を含み;分子量が6000~20000であることを特徴とする、イカリソウの酸性多糖画分又は請求項4に記載のイカリソウの酸性多糖画分。1糖類の含量がグルコースで計算して45~65、例えば5893であり、グルクロン酸の含量がガラクトースウロン酸で計算して5~15、例えば840であり;そして/または、2ラムノース、フコース、アラビノース、キシロース、マンノース、グルコース、ガラクトースが、ラムノース:フコース:アラビノース:キシロース:マンノース:グルコース:ガラクトース=100:033:444:038:064:087:526のモル比を有する、ことを特徴とする、請求項5に記載のイカリソウの酸性多糖画分。025モルlのNaHCO3を用いたDEAEセルロースカラムクロマトグラフィによって、請求項1~3のいずれか1項に記載のイカリソウの多糖から得られた溶離部であり、280nmの波長に吸収を有する、イカリソウの非糖画分。イカリソウの多糖の非糖画分であって分子量が2000~10000である、イカリソウの非糖画分、または請求項7に記載のイカリソウの非糖画分。請求項1~8のいずれか1項に記載のイカリソウの多糖および/またはイカリソウの酸性多糖画分並びに/或いはイカリソウの非糖画分と、医薬として許容される賦形剤とを含む、医薬組成物。請求項1~8のいずれか1項に記載のイカリソウの多糖および/またはイカリソウの酸性多糖画分並びに/或いはイカリソウの非糖画分を含む、ワクチンアジュバント。請求項1~8のいずれか1項に記載のイカリソウの多糖および/またはイカリソウの酸性多糖画分並びに/或いはイカリソウの非糖画分を含む、ワクチン調製物またはワクチン組成物。ワクチンアジュバント、ワクチン調製物、ワクチン組成物、または抗体の製造における、請求項1~8のいずれか1項に記載のイカリソウの多糖および/またはイカリソウの酸性多糖画分並びに/或いはイカリソウの非糖画分の使用。請求項1~8のいずれか1項に記載のイカリソウの多糖および/またはイカリソウの酸性多糖画分並びに/或いはイカリソウの非糖画分の有効量を用いるステップを含む、抗体の調製方法。発明者は、驚くべきことに、本発明で調製したイカリソウの多糖と、多糖画分および非糖画分が、ワクチン用アジュバントとして優れた機能を有することを見いだした。より詳細には、本発明は以下の特徴を有する。本発明の第1の特徴は、以下の方法によって得られるイカリソウの多糖イカリソウの全多糖とも呼ぶに関する。当該方法は、1イカリソウの葉を用意し、水を添加し、浸漬し、水抽出を行なって水抽出物溶液を取得し水抽出の時間は1~72時間であり、この時間は抽出温度に依存する。室温では24~48時間が好ましく、本発明の一実施態様では48時間である;2ステップ1で得られたその水抽出物溶液に対してエタノール沈殿を行ない、沈殿部を採取し、水を添加して溶かし、遠心分離し、上清を採取し、透析を実行し;3透析によって得られた透析物を採取し、凍結乾燥させてイカリソウの多糖を得る、方法である。本発明の第1の特徴によるイカリソウの多糖は、以下の1~13の項目のうちの任意の1つ以上を特徴とする。1ステップ1では、イカリソウの葉は、抽出されていないイカリソウの葉、または有機溶媒を用いた抽出の後に得られる残った葉であり、有機溶媒は、石油、酢酸エチル、クロロホルム、エチルエーテル、nヘキサン、シクロヘキサン、nブタノール、エタノール、メタノールなどである。有機溶媒を用いた抽出によって葉緑素や油溶性の小分子画分といった不純物を除去できる。有機溶媒を用いた抽出に関しては、温度は通常は室温であり、抽出時間は4~72時間、好ましくは12~48時間であり、本発明の一実施態様では24時間である。2ステップ1では、水は蒸留水または脱イオン水である。3ステップ1では、水抽出の温度は4~60°C、好ましくは20~60°C、より好ましくは20~50°Cである。この温度範囲だと、糖類の特性が失われることはなく、糖類の収率は温度の上昇とともに増加すると考えられる。4ステップ1では、抽出後に得られるイカリソウの葉を浸漬し、同じ条件下で抽出を1回以上実行し、水抽出物溶液を混合する。本発明の一実施態様では、抽出を2回実行する。5ステップ1では、水の量は、イカリソウの量lkgの5~20倍である。6ステップ1では、抽出をしている間は撹拌する。7ステップ1では、得られた水抽出物溶液を減圧下で50°C~55°Cにて濃縮し、濃縮された水抽出物溶液を得る。8ステップ2では、エタノール沈殿の条件は、エタノール沈殿の後にエタノールの最終濃度が60~80例えば70~75になるというものである。エタノール沈殿の時間は、12時間超例えば48~72時間が好ましい。9ステップ2では、エタノール沈殿の後に遠心分離によって得られた沈殿物に対してさらにもう1回以上エタノール沈殿を実施し、上清を混合する。10ステップ2では、透析に用いる透析バッグは、分子量カットオフが1000超である。11ステップ2では、水道水および/または蒸留水を用いて透析を行なう。12ステップ2では、透析時間は24~72時間であり、透析は1回以上実施する。13ステップ3では、得られた透析物を減圧下で50°C~55°Cにて濃縮した後、凍結乾燥させる。本発明の一実施態様では、イカリソウの多糖は、以下の方法によって得られる。この方法では、イカリソウの葉を用意し、蒸留水を添加し、撹拌を続けながら浸漬し;濾過し、濾液を遠心分離し;抽出されたイカリソウの葉を用いて同じ条件下で2回目の抽出を実行し;その2回の抽出による水抽出物溶液を1つにまとめ、減圧下で濃縮し、次いで3~4倍の体積のエタノールを添加してエタノール沈殿を実行し;そのエタノール沈殿による溶液を遠心分離し、沈殿部に水を添加して撹拌しながら溶かし、遠心分離し、沈殿物に対して同じ操作を2回実行し;可溶性の上清を1つにまとめ、分子量カットオフが1000超の透析バッグの中に入れ、水で透析を実行し;得られた透析物を減圧下で濃縮し、小さな瓶の中に入れ、凍結乾燥を実行してイカリソウの多糖を得る。別の一実施態様では、本発明のイカリソウの多糖は、以下の方法によって得られる。この方法では、イカリソウの葉を用意し、石油エーテルを添加して浸漬し;濾過し、減圧下で濾液から抽出物を回収し;抽出されたイカリソウの葉を自然揮発によって乾燥させ、蒸留水を添加し、撹拌を続けながら浸漬し;次いで濾過し、濾液を遠心分離し;抽出されたイカリソウの葉を用いて同じ条件下で2回目の抽出を実行し;その2回の抽出による水抽出物溶液を1つにまとめ、減圧下で濃縮し、次いで3~4倍の体積のエタノールを添加してエタノール沈殿を実行し;そのエタノール沈殿による溶液を遠心分離し、沈殿部に水を添加して撹拌しながら溶かし、遠心分離し、沈殿物に対して同じ操作を2回実行し;可溶性の上清を1つにまとめ、分子量カットオフが1000超の透析バッグの中に入れ、水で透析を実行し;得られた透析物を減圧下で濃縮し、小さな瓶の中に入れ、凍結乾燥を実行してイカリソウの多糖を得る。本発明の第2の特徴は、イカリソウの多糖、すなわち本発明の第1の特徴のいずれかによるイカリソウの多糖に関するものであり、この多糖は、1糖類の含量がグルコースで計算して25~45であり、グルクロン酸の含量がガラクトースウロン酸で計算して5~20であり;そして/または、2図1と図2に示した特徴を有する、ことを特徴とする。本発明の一実施態様では、糖類の含量はグルコースで計算して3560であり、グルクロン酸の含量はガラクトースウロン酸で計算して753である。本発明の第3の特徴は、イカリソウの酸性多糖画分に関する。この酸性多糖画分は、本発明の第1または第2の特徴によるイカリソウの多糖から025モルlのNaHCO3を用いてDEAEセルロースカラムクロマトグラフィによって得られた溶離部であり、硫酸フェノール着色により波長490nmに吸収を有する。本発明の第4の特徴は、イカリソウの酸性多糖画分、すなわち本発明の第3の特徴によるイカリソウの酸性多糖画分に関するものであり、この酸性多糖画分は、ラムノース、フコース、アラビノース、キシロース、マンノース、グルコース、ガラクトース、ガラクトースウロン酸を含んでいて;分子量が6000~20000である、ことを特徴とする。本発明の第4の特徴によるイカリソウの酸性多糖画分は、1糖類の含量がグルコースで計算して45~65であり、グルクロン酸の含量がガラクトースウロン酸で計算して5~15であり;そして/または、2単糖組成が、ラムノース、フコース、アラビノース、キシロース、マンノース、グルコース、ガラクトース、ガラクトースウロン酸であり、ラムノース:フコース:アラビノース:キシロース:マンノース:グルコース:ガラクトースのモル比が100:033:444:038:064:087:526である、ことを特徴とする。本発明の一実施態様では、糖類の含量はグルコースで計算して5893であり、グルクロン酸の含量はガラクトースウロン酸で計算して840である。本発明の一実施態様では、グルコースで計算した糖類の含量は、硫酸フェノール法によって決定され;ガラクトースウロン酸で計算したグルクロン酸の含量は、mヒドロキシルビフェニルによって決定される。本発明の第5の特徴は、イカリソウの非糖画分に関する。この非糖画分は、本発明の第1または第2の特徴によるイカリソウの多糖から025モルlのNaHCO3を用いてDEAEセルロースカラムクロマトグラフィによって得られた溶離部であり、波長280nmに吸収を有する。本発明の第6の特徴は、イカリソウの非糖画分、すなわち本発明の第5の特徴によるイカリソウの非糖画分に関するものであり、この非糖画分は、イカリソウの多糖の非糖画分であって2000~10000の分子量を有する。本発明の第7の特徴は、本発明の第1~第6の特徴のいずれか1つのイカリソウの多糖および/またはイカリソウの酸性多糖画分並びに/或いはイカリソウの非糖画分と、医薬として許容される賦形剤とを含む医薬組成物に関する。本発明の第8の特徴は、本発明の第1~第6の特徴のいずれか1つのイカリソウの多糖および/またはイカリソウの酸性多糖画分および/またはイカリソウの非糖画分を含むワクチン用アジュバントに関する。本発明の第9の特徴は、本発明の第1~第6の特徴のいずれか1つのイカリソウの多糖および/またはイカリソウの酸性多糖画分および/またはイカリソウの非糖画分を含むワクチン調製物またはワクチン組成物に関する。本発明の第10の特徴は、本発明の第1~第6の特徴のいずれか1つのイカリソウの多糖および/またはイカリソウの酸性多糖画分および/またはイカリソウの非糖画分を使用してワクチン用アジュバント、ワクチン調製物、ワクチン組成物、抗体のいずれかを製造することに関する。本発明はさらに、抗体を調製する方法に関するものであり、この方法は、本発明の第1~第6の特徴のいずれか1つのイカリソウの多糖および/またはイカリソウの酸性多糖画分および/またはイカリソウの非糖画分を有効量使用するステップを含んでいる。本発明はさらに、免疫化またはワクチン化の方法に関係し、この方法は、動物に有効量のワクチン調製物またはワクチン組成物を投与する操作を含んでいる。本発明では、イカリソウの多糖画分は、イカリソウの全多糖から分離することによって得られるさまざまな画分を意味する。本発明の一実施態様では、それは酸性糖画分例えばYYHG1である。本発明の別の一実施態様では、それは非糖画分例えばYYHG4である。本発明では、ワクチンに、弱毒ワクチン、不活化ワクチン、タンパク質ワクチン、DNAワクチン、ポリペプチドワクチンが含まれる。本発明では、有効量は、動物で免疫効果を持つことのできるワクチン調製物またはワクチン組成物の用量を意味する。本発明では、イカリソウの葉から水抽出法によってイカリソウの全多糖が得られる。そこから多糖画分と非糖画分がさらに分離されて同定され、それら画分の組成がさらに決定される。実験により、得られたイカリソウの全多糖、その酸性多糖画分、その非糖画分はすべて、免疫応答を増大させ、優れたアジュバント効果を持ち、ワクチンと抗体を調製する新たな方法を提供することが確認される。ところでアジュバント効果を有する多糖画分と非糖画分はイカリソウの全多糖から分離され、イカリソウの全多糖のアジュバント機構を研究するための基礎となるため、よりよいアジュバント効果を持つ多糖調製物と非糖調製物を見いだすことが可能になる。本発明の実施態様を以下の実施例に関して説明するが、当業者であれば、以下の実施例は単に本発明を説明するためのものであり、本発明の範囲を制限すると見なしてはならないことを理解できよう。実施例に具体的に記載されていないことは、通常の条件に従って、または製造者が勧めるようにして実行される。製造者の記載がない試薬または装置はすべて、市場で入手できる一般的な製品である。実施例1:イカリソウの全多糖の調製イカリソウの葉1kgを石油エーテルに添加し、室温にて24時間にわたって浸漬し、濾過した。減圧下で30~35°Cにて濾液から抽出物を回収した。石油エーテルで抽出したイカリソウの葉を自然揮発によって乾燥させ、15リットルの蒸留水を添加し、撹拌を続けながら室温20~30°Cで48時間にわたって浸漬し;続いて濾過し、濾液を10分間遠心分離し回転速度は3000回転/分であった、抽出されたイカリソウの葉に同じ条件下で2回目の抽出を実施した。その2回の抽出による水抽出物溶液を1つにまとめ、減圧下で50~55°Cにて濃縮して1000mlにした。その後、95エタノールを3回に分けて添加し3000ml、48~72時間にわたってエタノール沈殿を実行した。エタノール沈殿による溶液を10分間遠心分離した回転速度は3000回転/分であった。沈殿部を1000mlの水に添加し、撹拌して溶かし、遠心分離した。得られた沈殿物に同じ操作を2回実施した。可溶性の上清を1つにまとめ、透析バッグ分子量カットオフが1000超の中に入れた。水道水を用いて透析を48時間実行し、次いで蒸留水を用いて透析を24時間実行した。透析物を減圧下で50~55°Cにて濃縮することにより約200mlにして小さな瓶の中に入れ、凍結乾燥させることで、茶色の粉末、すなわちイカリソウの全多糖を得た収率は074であった。実施例2:イカリソウの全多糖の調製イカリソウの葉1kgを室温の蒸留水15リットルに添加し、撹拌を続けながら室温20~30°Cで48時間にわたって浸漬し;次いで濾過した。濾液を10分間遠心分離した回転速度は3000回転/分であった。抽出されたイカリソウの葉に同じ条件下で2回目の抽出を実施した。その2回の抽出による水抽出物溶液を1つにまとめ、減圧下で50~55°Cにて濃縮して1000mlにした。その後、95エタノールを3回に分けて添加し3000ml、48~72時間にわたってエタノール沈殿を実行した。エタノール沈殿による溶液を10分間遠心分離した回転速度は3000回転/分であった。沈殿部を1000mlの水に添加し、撹拌して溶かし、遠心分離した。得られた沈殿物に同じ操作を2回実施した。可溶性の上清を1つにまとめ、透析バッグ分子量カットオフが1000超の中に入れた。水道水を用いて透析を48時間実行し、次いで蒸留水を用いて透析を24時間実行した。透析物を減圧下で50~55°Cにて濃縮することにより約200mlにして小さな瓶の中に入れ、凍結乾燥させることで、茶色の粉末、すなわちイカリソウの全多糖を得た収率は081であった。実施例3:イカリソウの全多糖の調製イカリソウの葉1kgを55~60°Cの蒸留水15リットルに添加し、撹拌を続けながら48時間にわたって浸漬し;次いで濾過した。濾液を10分間遠心分離した回転速度は3000回転/分であった。抽出されたイカリソウの葉に同じ条件下で2回目の抽出を実施した。その2回の抽出による水抽出物溶液を1つにまとめ、減圧下で50~55°Cにて濃縮して1000mlにした。その後、95エタノールを3回に分けて添加し3000ml、48~72時間にわたってエタノール沈殿を実行した。エタノール沈殿による溶液を10分間遠心分離した回転速度は3000回転/分であった。沈殿部を1000mlの水に添加し、撹拌して溶かし、遠心分離した。得られた沈殿物に同じ操作を2回実施した。可溶性の上清を1つにまとめ、透析バッグ分子量カットオフが1000超の中に入れた。水道水を用いて透析を48時間実行し、次いで蒸留水を用いて透析を24時間実行した。透析物を減圧下で50~55°Cにて濃縮することにより約200mlにして小さな瓶の中に入れ、凍結乾燥させることで、茶色の粉末、すなわちイカリソウの全多糖を得た収率は19であった。実施例4:イカリソウの多糖画分の調製室温での抽出によって得た実施例1で調製した1gのイカリソウの全多糖YYHGを50mlの蒸留水に添加して溶かした。得られた溶液をDEAEセルロースカラムφ8cm×35cmに装填し、水、025モルlのNaHCO3、05モルlのNaHCO3、01モルlのNaOHの順番で連続的に溶離させた。流速は1ml分であり、回収量は10ml/チューブであった。多糖画分YYHG0490nmの吸収、H2O、YYHG1490nmの吸収、025モルlのNaHCO3、YYHG2490nmの吸収、05モルlのNaHCO3、YYHG3490nmの吸収、01モルlのNaOH、非糖画分YYHG4280nmの吸収、025モルlのNaHCO3、YYHG5280nmの吸収、05モルlのNaHCO3、YYHG6280nmの吸収、01モルlのNaOHが順番に得られた。DEAEセルロースカラムクロマトグラフィ上の全多糖YYHGのスペクトルを図1と図2に示す。実施例5:イカリソウの全多糖、酸性多糖画分、非糖画分の物理化学的特性イカリソウの全多糖YYHGを実施例1~3で調製し、酸性多糖画分YYHG1と非糖画分YYHG4を実施例4で調製した。1.イカリソウの全多糖と酸性多糖画分のグルコースで計算した糖の含量の決定1実験方法糖の含量は、硫酸フェノール法参考文献:DuboisM他、糖とその関連物質を決定するための比色法、AnalChem、1956年;第28巻:350~356ページによって決定した。2実験結果全多糖YYHGは茶色の粉末であり、糖の含量はグルコースで計算して3560であった。酸性多糖画分YYHG1は明るい黄色の粉末であり、糖の含量はグルコースで計算して5893であった。非糖画分YYHG4は明るい黄色の粉末であった。2.イカリソウの全多糖と酸性多糖画分のガラクトースウロン酸で計算したグルクロン酸の含量の決定1実験方法グルクロン酸の含量は、mヒドロキシルビフェニル法参考文献:BlumenkrantzN他、ウロン酸の新たな定量法、AnalBiochem、1973年;第54巻:484~489ページによって決定した。2実験結果全多糖YYHGは、ガラクトースウロン酸で計算してグルクロン酸の含量が753であった。酸性多糖画分YYHG1は、ガラクトースウロン酸で計算してグルクロン酸の含量が840であった。3.イカリソウの全多糖に含まれる酸性多糖画分と非糖画分の分子量の決定1実験方法装置:HPLC、Water社;クロマトグラフィ用カラム:TSKsw4000;移動相:01MのNa2SO4;流速:06ml分;検出装置:差動式検出器。2実験結果酸性多糖画分YYHG1は分子量が6000~20000であった。非糖画分YYHG4は分子量が2000~10000であった。4.イカリソウの全多糖に含まれる酸性多糖画分の単糖組成酸性多糖画分YYHG1の単糖組成は、ラムノース、フコース、アラビノース、キシロース、マンノース、グルコース、ガラクトース、ガラクトースウロン酸であり、ラムノース、フコース、アラビノース、キシロース、マンノース、グルコース、ガラクトースのモル比は、100:033:444:038:064:087:526であった。薬材料は供給源とバッチが異なるため、その中に含まれる糖類の含量とグルクロン酸の含量は同じではありえず、本実施例の値の周辺で変動する。例えば全多糖YYHGは糖の含量が25~45であり、酸性多糖画分YYHG1は糖の含量が45~65であり、全多糖YYHGはグルクロン酸の含量が5~20であり、酸性多糖画分YYHG1はグルクロン酸の含量が5~15である。実施例6:イカリソウの全多糖の生物実験実施例1で調製した室温で抽出したイカリソウの全多糖YYHGをアジュバントとして使用した。オボアルブミンOVAを抗原として使用した。そのアジュバントとOVAを1つにまとめ、マウスに筋肉内注射し、生じた抗体力価を測定した。具体的な実験方法は以下の通りであった。実験動物:BalbC、生後6~8週、1つの群に5匹、メス。薬の濃度:全多糖YYHG:20mgml;OVA:12mgml;アルミニウムアジュバント:2mgml。対照溶液:生理食塩水。投与量:OVA60μg50μlマウス;アルミニウムアジュバント100μg50μlマウス;YYHG1mg50μlマウス。グループ分け:1P群:PBSOVA;2アルミニウムアジュバント群:アルミニウムアジュバントOVA;3YYHG群:YYHGOVA;4溶媒対照群:生理食塩水。注射する前に同じ体積を混合し、マウスの右後肢に100μlを筋肉内注射した。免疫化計画:免疫化のためマウスをグループ分けした3週間後に最初の免疫化注射を実施し、血液サンプルを尾の静脈から採取し、血清中の抗体力価を測定した。抗体力価は、最初の免疫化注射から3週間後に測定した。ブースタ免疫化を4週間後に実施した。2回目の免疫化注射の2週間後、血液サンプルを尾の静脈から採取し、血清中の抗体力価を測定した。力価に応じて3回目の免疫化注射を測定の2週間後に実施した。抗体力価をELISA法によって測定した。ELISA法のための試薬の調製:1.抗体被覆溶液:50ミリモル/lの炭酸塩緩衝溶液pHは96。1696gの無水Na2CO3と2856gのNaHCO3を計量し、水を添加して溶かして体積を1000mlにした。pHを調節して96にした。2.洗浄溶液10×PBST、pH74:80gのNaCl、2gのKCl、29gのNa2HPO4、2gのKH2PO4、10mlのトゥイーン20を計量した。2回蒸留した水を添加して体積を1000mlにした。pHを74に調節した。この洗浄溶液を10倍に希釈して使用した。3.ブロッキング溶液:1のBSA。それを50ミリモルlのPBSpH74に溶かした。4.基質溶液TMBH2O2:基質溶液AとBを同じ体積混合して使用し、30H2O2を添加して最終濃度を05にした。5.基質溶液ATMB:200mgのTMBと100mlの無水エタノールを用意し、2回蒸留した水を添加して体積を1000mlにした。6.基質溶液B01モルlのクエン酸02モルlのNa2HPO4緩衝溶液:248gのNa2HPO4と1933gのクエン酸に2回蒸留した水を添加して体積を1000mlにし、pHが50~54になるように調節した。7.2NのH2SO48.OVAを抗原被覆溶液に溶かして濃度を4μgmlにした。96ウエルのプレートCosta社上で1つのウエルにつき100μlを用い、4°Cにて一晩にわたって被覆を実行した。PBSTを用いて3回洗浄した。1BSAPBSを37°Cで用いて1時間かけてブロッキングを実行した。PBSTを用いて3回洗浄した後、PBSTで希釈したマウスの血清サンプルをプレートに100μlウエルの割合で添加し、37°Cで1時間インキュベートした。PBSTを用いて3回洗浄した。HRPヤギ抗マウスIgG1:1000、PBSTを添加した後、37°Cで1時間インキュベートした。PBSTを用いて6回洗浄した。100μlの基質溶液を添加して着色した後、2NのH2SO4を50μl添加して反応を停止させ、A450を測定した。実験結果:イカリソウの全多糖YYHG、生理食塩水、Al3を別々に同じ体積でOVAと混合し、1匹につき100μlを用いてマウスを免疫化した。免疫化の3週間後、血液サンプルを尾の静脈から採取した。血清を採取し、1:200から1:12800まで同じ比率で徐々に希釈した。血清の抗体力価をELISA法によって決定した。実験結果から、どの試験群も最初の免疫化の後は抗体力価が比較的低いことがわかった図3。2回目と3回目の免疫化の後、YYHGを注射した群のマウスは血清力価が有意に増大した図4と図5参照。これは、YYHGが抗体の産生促進に大きな効果を有することを示している。実施例7:イカリソウの多糖の画分の生物実験実施例1で調製した室温で抽出したイカリソウの全多糖YYHGに対してDEAEセルロースカラムクロマトグラフィを実施して酸性多糖画分YYHG1と非糖画分YYHG4を得た。YYHG1とYYHG4を別々にアジュバントとして使用した。オボアルブミンOVAを抗原として使用した。そのアジュバントと抗原を1つにまとめ、マウスに筋肉内注射し、生じた抗体力価を測定した。具体的な実験方法は実施例6と同じであった。薬の濃度:YYHG1:10mgml;YYHG4:10mgml;OVA:12mgml;アルミニウムアジュバント:2mgml;対照溶媒:生理食塩水。投与量:YYH60μg50μlマウス;アルミニウムアジュバント100μg50μlマウス;YYHG1:05mg50μlマウス;YYHG4:05mg50μlマウス。グループ分け:1P群:PBSOVA;2アルミニウムアジュバント群:アルミニウムアジュバントOVA;3YYHG1群:YYHG1OVA;4YYHG4群:YYHG4OVA。注射する前に同体積を混合し、マウスの右後肢に100μlを筋肉内注射した。実験結果:イカリソウの全多糖YYHGをDEAEセルロースカラムクロマトグラフィによって分離し、酸性多糖画分YYHG1と非糖画分YYHG4を得た。免疫化計画に従ってアジュバントの活性を決定した。2回目の免疫化の後の測定結果から、YYHG1群とYYHG4群は大きな免疫アジュバント活性を持っていて、抗体の産生を促進できることがわかった図6と図7。実施例8:イカリソウの多糖の画分の生物実験実施例3で調製した55~60°Cで抽出したイカリソウの全多糖YYHGをDEAEセルロースカラムクロマトグラフィによって分離し、酸性多糖画分YYHG1と非糖画分YYHG4を得た。抗原としてH1N1ウイルスのライセートを用いて両方の糖画分の活性を決定した。YYHG1とYYHG4を別々にアジュバントとして使用し、H1N1ウイルスのライセートを抗原として使用した。異なる用量のYYHG1とYYHG4を個別にインフルエンザAワクチンH1N1ウイルスライセートと組み合わせ、マウスに筋肉内注射し、生じた抗体力価を測定した。具体的な実験法は、実施例6と同じであった。混合後の薬の濃度:YYHG1:10、5、25、125mgml;YYHG4:5、25、125mgml;H1N1:30μgml;アルミニウムアジュバント:1mgml;対照溶液:生理食塩水。投与量:H1N1:3μg100μgマウス;アルミニウムアジュバント100μg100μlマウス;YYHG1:10、05、025、0125mg100μlマウス;YYHG4:05、025、0125、0mg100μlマウス。グループ分け:1P群:H1N1YYHG1またはYYHG4:0mg100μlマウス;2アルミニウムアジュバント群:アルミニウムアジュバントH1N1;3YYHG1群:YYHG1H1N1;4YYHG4群:YYHG4H1N1。注射する前に同体積を混合し、マウスの右後肢に100μlを筋肉内注射した。実験結果:イカリソウの全多糖YYHGをDEAEセルロースカラムクロマトグラフィによって分離し、酸性多糖画分YYHG1と非糖画分YYHG4を取得し、インフルエンザAワクチンH1N1ウイルスライセートと組み合わせた。その結果から、マウス1匹につき0125mg~1mgの用量のYYHG1と0125mg~05mgの用量のYYHG4を用いて最初の免疫化を行なったマウスの血清中のH1N1ウイルス抗体力価は比較的高いことがわかった。両方とも比較的大きなアジュバント活性を持ち、用量の異なる群の間で有意な差はなかった。これは、少ない用量でも効果があることを示している図8~図11。実施例9:イカリソウの多糖の画分の生物実験実施例2で調製した室温で抽出したイカリソウの全多糖YYHGをDEAEセルロースカラムクロマトグラフィによって分離し、酸性多糖画分YYHG1と非糖画分YYHG4を得た。抗原としてH1N1ウイルスのライセートを用いて両方の糖画分の活性を決定した。具体的な実験法は、実施例8と同じであった。その結果から、室温で抽出したYYHG1とYYHG4をH1N1抗原と組み合わせると、最初の免疫化の後に比較的大きな力価の抗体が産生することがかわった図12。本発明の実施態様を詳細に説明したが、当業者であれば、開示した教示内容に従ってこうした詳細を改変または変更できることがわかるであろう。そのような改変と変更はすべて、本発明の保護範囲に含まれる。本発明の範囲は、添付の請求項とそのあらゆる等価物によって与えられる。