ポリカーボネートを含んでなるフィルターを含む、らせん菌分離用デバイス。フィルターが、02~08μmの範囲内の孔径を有する、請求項1に記載のデバイス。フィルターが、045~06μmの範囲内の孔径を有する、請求項2に記載のデバイス。らせん菌が、カンピロバクター目に属する細菌から選択される、請求項1または2に記載のデバイス。カンピロバクター目に属する細菌が、カンピロバクター属菌、ヘリコバクター属細菌およびアルコバクター属細菌から選択される、請求項4に記載のデバイス。請求項1~3のいずれかに記載のデバイスのフィルターに、らせん菌を含み得る検体を接触させて、らせん菌をフィルターに対して通過させる工程を含む、らせん菌の分離方法。上記工程を圧力下、吸引減圧下、または遠心濾過で行う、請求項6に記載の方法。らせん菌が、カンピロバクター目に属する細菌から選択される、請求項6または7に記載の方法。カンピロバクター目に属する細菌が、カンピロバクター属菌、ヘリコバクター属細菌およびアルコバクター属細菌から選択される、請求項8に記載の方法。以下の工程を含む、らせん菌の検出方法:i請求項1~3のいずれかに記載のデバイスのフィルターに、らせん菌を含み得る検体を接触させて、らせん菌をフィルターに対して通過させる工程、iiフィルターを通過したらせん菌を検出する工程。フィルターを通過したらせん菌を、検出前に培養する工程をさらに含む、請求項10に記載の方法。上記工程iを圧力下、吸引減圧下、または遠心濾過で行う、請求項10または11に記載の方法。らせん菌が、カンピロバクター目に属する細菌から選択される、請求項10~12のいずれかに記載の方法。カンピロバクター目に属する細菌が、カンピロバクター属菌、ヘリコバクター属細菌およびアルコバクター属細菌から選択される、請求項13に記載の方法。以上述べたように、抗菌剤を含んだ分離培地は、主にCjejuniおよびCcoliの分離のための培地であり、全てのカンピロバクター属菌に適用できるものはない。一方、カンピロバクター属菌の検査法として、カンピロバクター属菌の菌種、薬剤感受性に関わらずに分離が可能なフィルター法が現在あまり利用されていないのは、その検出率の低さ、簡便性の問題が挙げられる。本発明は、既存のフィルター法よりもらせん菌の分離率を高めることのできる改良フィルター法、該方法に利用可能なデバイスフィルターユニット等、および簡便に検査が可能ならせん菌の分離および検出方法を提供することを課題とする。本発明者らは、上記課題を解決することを目的としてフィルター法に用いるメンブレンの材質について詳細に検討した結果、既存の選択培地と遜色ないらせん菌の分離率を示すフィルターを見出し、本発明を完成するに至った。すなわち、本発明は、以下のものを含む:[1]ポリカーボネートを含んでなるフィルターを含む、らせん菌分離用デバイス。[2]フィルターが、02~08μmの範囲内の孔径を有する、上記[1]に記載のデバイス。[3]フィルターが、045~06μmの範囲内の孔径を有する、上記[2]に記載のデバイス。[4]らせん菌が、カンピロバクター目に属する細菌から選択される、上記[1]または[2]に記載のデバイス。[5]カンピロバクター目に属する細菌が、カンピロバクター属菌、ヘリコバクター属細菌およびアルコバクター属細菌から選択される、上記[4]に記載のデバイス。[6]上記[1]~[3]のいずれかに記載のデバイスのフィルターに、らせん菌を含み得る検体を接触させて、らせん菌をフィルターに対して通過させる工程を含む、らせん菌の分離方法。[7]上記工程を圧力下、吸引減圧下、または遠心濾過で行う、上記[6]に記載の方法。[8]らせん菌が、カンピロバクター目に属する細菌から選択される、上記[6]または[7]に記載の方法。[9]カンピロバクター目に属する細菌が、カンピロバクター属菌、ヘリコバクター属細菌およびアルコバクター属細菌から選択される、上記[8]に記載の方法。[10]以下の工程を含む、らせん菌の検出方法:i上記[1]~[3]のいずれかに記載のデバイスのフィルターに、らせん菌を含み得る検体を接触させて、らせん菌をフィルターに対して通過させる工程、iiフィルターを通過したらせん菌を検出する工程。[11]フィルターを通過したらせん菌を、検出前に培養する工程をさらに含む、上記[10]に記載の方法。[12]上記工程iを圧力下、吸引減圧下、または遠心濾過で行う、上記[10]または[11]に記載の方法。[13]らせん菌が、カンピロバクター目に属する細菌から選択される、上記[10]~[12]のいずれかに記載の方法。[14]カンピロバクター目に属する細菌が、カンピロバクター属菌、ヘリコバクター属細菌およびアルコバクター属細菌から選択される、上記[13]に記載の方法。本発明のデバイスおよび方法によれば、らせん菌を選択的に通過させる特定のフィルターを用いることで、既存の選択培地と遜色ない分離率で、簡便に検体中に含まれるらせん菌を分離し、検出することができる。したがって、本発明のデバイスおよび方法は、食中毒の原因菌の検査および特定に好適に適用することができる。また、本発明によれば、CjejuniおよびCcoli以外のこれまで見逃されていたカンピロバクター属菌、ヘリコバクター属菌、アルコバクター属菌等のらせん菌や、抗菌剤に感受性のCjejuniおよびCcoliを効率よく分離検査することができる。さらに、本発明を検査に適用することで、熟練者でなくともカンピロバクター属菌をはじめとするらせん菌のコロニーを容易に識別し、検査することができる。本発明におけるらせん菌とは、らせん状の形状を有する細菌、例えば、カンピロバクター目Campylobacteralesに属する細菌を意味し、これには、例えば、カンピロバクター属菌例えば、Cjejuni、Ccoli、Cfetus、Chyointestinalis、Cconcisus、Cupsaliensis、Clari、Chelveticus、Chominis、Clanienae、Ccanadensis、Ccurvus、Cinsulaenigrae等、ヘリコバクター属菌例えば、Helicobacterpylori、Helicobactercinaedi等、アルコバクター属菌例えば、Abutzleri、ACryaerophilus、Askirrowii、Anitrofigilis等等が含まれる。本発明におけるフィルターは、材料として、ポリカーボネートを含んでなり、そして、らせん菌を選択的に通過させることができるものである。上記フィルターは、本発明の効果を損なわない範囲で、ポリカーボネート以外の材料を含んでいてもよく、例えば、材料全体のうち、50重量まで、好ましくは60重量までの他の材料を含んでいてもよい。このような材料としては、フィルター用として使用することができる材料であれば特に限定されない。また、ポリカーボネートは、化学的に変性されたものでもよく、例えば、塩化ビニル、ポリエステル、エポキシ、ウレタン、シリコン、ポリエチレン、フッ素等の処理等が施されたものでもよい。上記フィルターの孔径は、らせん菌を選択的に分離する観点から、好ましくは02~08μmの範囲内、より好ましくは045~06μmの範囲内である。なお、本明細書中でいう孔径は、バブルポイント試験法によって決定された最大孔径である。また、上記フィルターとしては、厚さが7~22μm程度であり、半透明で、ガラスのような滑らかな表面を有するものであることが好ましい。また、孔径が正確で、孔径分布が一定になるように作製されているものが好ましい。本発明のらせん菌分離用デバイスは、上記フィルターを必須の構成要素として含むものであれば特に限定されない。例えば、フィルターそのものでもよく、その他の構成要素と共にフィルターユニットフィルターと一体になっているものまたはキットフィルターと一体になっていないものを構成していてもよい。上記デバイスにおけるフィルター以外の構成要素としては、例えば、フィルターを支持するための部材枠材等、検体の受容器、フィルターに検体を、圧力をかけて導入するための部材注射器および遠心用カップ、吸引ユニットなどのアダプター等、濾過フィルター等の従来のフィルターユニットにおける各種の部材、フィルターを通過したらせん菌を培養するための培地、フィルターを通過したらせん菌を回収するための部材等が挙げられる。上記らせん菌を培養するための培地としては、特に限定されず、例えば、血液寒天培地、ブルセラ培地、ミューラーヒントン培地、ニュートリエントブロス培地、スキロー培地、mCCDA培地、カルマリ培地、バツラー培地、ボルトン培地、プレストン培地、CAT培地等のらせん菌の培養に通常使用される培地が挙げられる。また、上記培地は、各種の抗菌剤を含んでいてもよく、例えば、トリメトプリム、バンコマイシン、ポリミキシンB、バシトラシン、シクロヘキシミド、硫酸コリスチン、セファロチン、ノボビオシン、セフォペラゾン、アムホテリシンB等を含んでいてもよい。また、本発明は、上記デバイスを使用するらせん菌の分離方法を提供する。当該方法は、上記デバイスのフィルターに、らせん菌を含み得る検体を接触させて、らせん菌をフィルターに対して通過させる工程を含む。上記らせん菌を含み得る検体としては、らせん菌を含む可能性のある検体であれば特に限定されず、例えば、糞便、食品、牛乳、愛玩動物の食餌、排泄物等の他、河川、池、水槽、井戸水などの環境水や飲料水等が挙げられる。上記らせん菌を含み得る検体を上記デバイスのフィルターに接触させると、検体中にらせん菌が存在する場合、らせん菌はフィルターを通過しやすく、他の菌種はフィルターを通過しにくいため、結果として、らせん菌を選択的に分離することができる。上記検体を上記デバイスのフィルターに接触させる方法は特に限定されず、例えば、フィルター上に検体を滴下または注いでもよく、フィルター上に検体を塗布してもよい。上記工程は、圧力をかけずに行ってもよく、圧力下加圧下で行ってもよい。上記工程を圧力下で行う場合、例えば、注射器等を用いて検体をフィルター上に押し付けながら行うことができる。また、吸引ユニットを用いて吸引濾過させてもよい。或いは、検体をフィルター上に導入した後、遠心分離を行うこともできる。圧力下で行う場合、らせん菌のフィルター通過速度が高められるので、より迅速にらせん菌を他の菌種から分離することができる。また、上記らせん菌の分離方法においては、スキロー培地、mCCDA培地、バツラー培地、カルマリ培地などの選択培地を併用することもできる。また、本発明は、上記デバイスを使用してらせん菌を分離し、次いで、らせん菌を検出する方法を提供する。当該方法は、i上記デバイスのフィルターに、らせん菌を含み得る検体を接触させて、らせん菌をフィルターを通過させる工程、iiフィルターを通過したらせん菌を検出する工程を含む。上記工程iは、上記らせん菌の分離方法と同様に行うことができる。上記工程iiにおけるらせん菌の検出は、グラム染色、カタラーゼ試験およびオキシダーゼ試験、MultiplexPCR、Cjejuniが特異的に保有する馬尿酸水解酵素遺伝子のPCR、APICampyBIOMERIEUXを用いた生化学的性状試験等の従来のらせん菌の同定方法およびそれに基づく変法等を用いて行うことができる。本発明のらせん菌の検出方法においては、上記工程iiにおいてらせん菌を検出する前に、フィルターを通過したらせん菌を培養する工程をさらに含んでいてもよい。これにより、検体中に含まれるらせん菌の数が少ない場合であっても、らせん菌を検出することができる。上記培養に使用する培地としては、例えば、上記デバイスの説明において例示した培地等が挙げられる。また、培養培地には、上記デバイスの説明において例示した抗菌剤等の抗菌剤が含まれていてもよく、その場合、使用する抗菌剤に感受性の他の菌種を増殖させずに、らせん菌を選択的に増殖させることができる。また、温度、二酸化炭素または酸素濃度等の培養条件は、特に限定されず、らせん菌の培養に通常使用される条件を用いることができる。例えば、血液寒天培地上、37°Cの微好気条件O2濃度約3~10、CO2濃度5~15、N2濃度約75~92、水素ガスを要求する菌種に関しては、必要に応じて窒素ガスの代わりにH2濃度約0~60で置換する下、12~72時間程度、増殖の遅い菌株に関しては10日程度の条件下で培養することができる。また、上記らせん菌の検出方法においては、寒天培地上に形成されたクリアーもしくは、灰色がかった薄ピンク色のらせん菌に特徴的なコロニーが形成され、かつグラム染色によって顕微鏡下でグラム陰性、らせん状形態を観察することでできる。また、直接顕微鏡下で観察し、高い運動性を持ち、直線的な動きを行うらせん形状の菌体を観察することでもできる。また、必要に応じて、らせん菌を検出出来る遺伝子を標的としたPCR法、コロニーハイブリダイゼーション法、16SrRNA遺伝子の解析等の遺伝子検査を併用することもできる。以下、実施例をあげて本発明を具体的に説明するが、本発明は以下の実施例に限定されるものではない。以下の実施例において、カンピロバクター属菌として、Cjejuni81176株以下、Cj81176を用い、非カンピロバクター属菌として、Citrobacteramalonaticus患者検体分離株P3211f4、Escherichiacoli患者検体分離株P3210f6およびPseudomonasaeruginosa患者検体分離株P2497f4の3菌種を用いた。また、フィルターとして、孔径045μm、065μm、08μmの混合セルロースフィルター以下、MCフィルター日本ミリポア株式会社および孔径04μm、06μm、08μmのポリカーボネートフィルター以下、PCフィルター日本ミリポア株式会社を用いた。実施例1~3および比較例1~3Cj81176を血液寒天培地上で18時間培養し、培地上のコロニーを掻き取り、PBSに懸濁後、OD600=01の菌液を調製した。濁度01の菌液を10倍段階希釈して作製した103、102、101cfu100μLの菌液を、血液寒天培地上に載せた孔径045μm、065μm、08μmのMCフィルターおよび孔径04μm、06μm、08μmのPCフィルター上にそれぞれ100μL、3枚ずつ接種した。37°Cの微好気条件下で30分間静置後、フィルターを取り除き、37°C微好気条件下で2日間培養し、通過したコロニーの平均数以下、通過菌数をそれぞれ算出した。添加した菌液中のコロニーカウントも血液寒天培地を用いて同様に行い、添加菌液中の菌数に対する通過菌数の割合を通過率としてそれぞれ算出した。Cj81176の純培養を用いたフィルター通過実験では、MCフィルターの孔径045μm、065μm、08μmでは、通過率はそれぞれ06、07、17であった。また、PCフィルターの孔径04μm、06μm、08μmでは、通過率はそれぞれ19、109、218であった表1。両フィルター共に、孔径が大きくなるに従って、通過率が上昇する傾向が見られたが、孔径06μmおよび08μmでは、MCフィルターとPCフィルターではPCフィルターの通過率が10倍以上高い値を示した。実施例4および比較例4Cj81176および非カンピロバクター属菌の培養および希釈菌液の作製方法は、上記の方法に準じた。Cj81176を102cfu100μL、Camalonaticus、Ecoli、およびPaeruginosaを104、103、102、101、100cfu100μLにそれぞれ調製した。Cj81176の菌液にCamalonaticus、Ecoli、Paeruginosaの菌液を混合し、Cj81176に対する非カンピロバクター属菌の菌数が1:100、1:10、1:1、10:1、100:1となるように混合菌液を作製した。この混合菌液を、血液寒天培地上に載せた孔径065μmのMCフィルターおよび孔径06μmのPCフィルターの2種類のフィルター上に100μL、3枚ずつ接種した。37°C微好気条件下で30分間静置後、フィルターを取り除き、さらに微好気条件下で2日間培養した。培養後、各濃度におけるCj81176とCamalonaticus、EcoliおよびPaeruginosaの通過菌数を、上記の方法に準じてそれぞれ算出した。各コロニーの判別はコロニー形状およびグラム染色にて行った。Cj81176とCamalonaticus、EcoliおよびPaeruginosaを混合して各フィルターの通過菌数をそれぞれ比較したところ、孔径065μmのMCフィルターにおいて、Cj81176とCamalonaticusの混合菌液ではCj81176の平均通過菌数は01cfuであったのに対し、Camalonaticusは104、103、102、101、100cfu100μLの5種類の菌濃度でそれぞれ97cfu、067cfu、03cfu、13cfu、0cfuであった。Cj81176とEcoliの混合菌液ではCj81176の平均通過菌数は03cfuであったのに対し、Ecoliでは上記5種類の菌濃度でそれぞれ20cfu、03cfu、0cfu、07cfu、17cfuであった。同様にCj81176とPaeruginosaの混合菌液ではCj81176の平均通過菌数は03cfuであったのに対し、Paeruginosaは上記5種類の菌濃度でそれぞれ43cfu、57cfu、0cfu、07cfu、10cfuであった。また孔径06μmのPCフィルターにおいて、Cj81176とCamalonaticusの混合菌液ではCj81176の平均通過菌数は59cfuであったのに対し、Camalonaticusはどの菌濃度でも通過が見られなかった。Cj81176とEcoliの混合菌液ではCj81176の平均通過菌数は10cfuであったのに対し、Ecoliではどの菌濃度でも通過が見られなかった。同様にCj81176とPaeruginosaの混合菌液ではCj81176の平均通過菌数は34cfuであったのに対し、Paeruginosaは最も濃い菌濃度で07cfu、それ以外の4種類の菌濃度では通過は見られなかった。すなわち、PCフィルターはカンピロバクターの通過率が高いのみならず、MCフィルターより効率的に他菌を排除することがわかった。以上の結果を表2に示す。表2の結果から、らせん菌CampylobacterjejuniCj81176株とCamalonaticusを1100の割合で混合したサンプルを混合セルロースMCおよびポリカーボネートPCフィルターをもちいてフィルター法にて分離培養したところ、混合セルロースMCフィルターではらせん菌Cjの通過は全く見られず、混合したCamalonaticusは平均97個のコロニーが観察された。しかしながら、ポリカーボネートフィルターを用いた場合、混合したCamalonaticusのコロニーは認められず、らせん菌Cjは平均37個のコロニーが観察された。混合比率を変えた場合や他菌種を混合した場合でも通過は同様の結果が見られていることから、ポリカーボネートフィルターを用いたフィルター法では明らかにらせん菌以外の菌が効率よく排除されていることがわかった。実施例5および比較例5カンピロバクター属菌陽性の下痢症患者44検体の直腸スワブを500μLの滅菌生理食塩水に懸濁後、孔径06μmのPCフィルターを用いたフィルター法と、mCCDA培地を用いて、上記の方法に従って分離法の比較を行った。カンピロバクター属菌陽性の下痢症患者44検体を用いて、患者検体の検査で最も陽性率の高かったmCCDA培地と、孔径06μmのPCフィルターによるフィルター法を比較した。その結果、mCCDA培地では陽性44検体の内、36検体からカンピロバクターが分離され、その分離率は818であった表3。これは、最初に患者検体を調べた時とほぼ変わらない結果であった表3。一方、孔径06μmのPCフィルターを用いた場合、陽性44検体の内、37検体からカンピロバクターが分離され、分離率は84であった表3。これらのことより、PCフィルターを用いた新規カンピロバクターの分離法は目視による菌の判別も容易な優れた分離法であると考えられた。実施例6および比較例6<目的>カンピロバクター目Campylobacteralesに属する細菌について本発明の分離用デバイスの性能を評価する。<方法>Cjejuni、Ccoli、Cfetus、Clari、Cupsaliensis、Chyointestinalis、Abutzleriを微好気条件下5O210CO285N237°Cで1晩培養し、得られた菌体を滅菌PBSで希釈した。希釈した菌液を段階希釈し、血液寒天培地上に乗せた孔径φ065μmの混合セルロースMCフィルターおよびφ06μmのポリカーボネートPCフィルター上にそれぞれ100μl、3枚ずつ接種した。37°Cの微好気条件下で30分静置後、フィルターを取り除き、37°C、微好気条件下で2日から3日間培養し、得られたコロニー数を算出した。調製した菌液も同様に血液寒天培地で培養し、添加菌数を算出した。それぞれのフィルター通過菌数を添加菌数で除し、通過率を算出した。<結果>CjejuniのMCフィルターでの回収率は174±032であったのに対し、PCフィルターでは1263±21と、MCフィルターの約7倍高い値を示した。また、Cfetus、Clari、Abutzleriについてもそれぞれ約5倍、約9倍、約4倍とPCフィルターの方が高い値を示した。CupsaliensisとChyointestinalisはMCフィルターでは全く回収できなかったが、PCフィルターではそれぞれ41±18および622±168と、高い回収率を示した。一方、Ccoliでは他菌の様な著明な回収率向上は認められなかったが、MCフィルターでの回収率157±071に対して、PCフィルターでは190±124と、約12倍PCフィルターの方が高い値を示した表4、図1。<考察>食中毒細菌として重要な菌種であるCjejuni、Ccoliをはじめ、他のカンピロバクター属細菌や、近年食中毒細菌として注目されているアルコバクター属菌でもPCフィルターによる分離が有効であった。