"配列番号1で表されるアミノ酸配列において、112番目および378番目より選ばれる1つ以上のアミノ酸残基が他のアミノ酸残基に置換されたアミノ酸配列からなる蛋白質。配列番号1で表されるアミノ酸配列からなる蛋白質のホモログ蛋白質以下、YwfEホモログ蛋白質という。のアミノ酸配列において、YwfEホモログ蛋白質のアミノ酸配列と配列番号1で表されるアミノ酸配列とをアライメントしたときに、YwfEホモログ蛋白質のアミノ酸配列において、配列番号1の112番目および378番目より選ばれるアミノ酸残基に対応するアミノ酸残基のうち、一つ以上のアミノ酸残基が他のアミノ酸残基に置換されたアミノ酸配列からなる蛋白質。他のアミノ酸残基が、112番目はValおよび378番目はArgである請求項1または2記載の蛋白質。112番目のアミノ酸残基がValであり、かつ378番目のアミノ酸残基がArgであるアミノ酸配列からなる請求項1または2に記載の蛋白質。請求項1~4のいずれかに記載の蛋白質をコードするDNA。請求項5記載のDNAを含有する組換え体DNA。請求項6記載の組換え体DNAで宿主細胞を形質転換して得られる形質転換体。請求項1~4のいずれか記載の蛋白質または該蛋白質を生産する能力を有する宿主細胞の培養物若しくは該培養物の処理物、1種または2種のL-アミノ酸またはβアミノ酸を水性媒体中に存在せしめ、該媒体中にジペプチドを生成、蓄積させ、該媒体から該ジペプチドを採取することを特徴とするジペプチドの製造法。請求項1~4のいずれか記載の蛋白質を生産する能力を有する宿主細胞を培地に培養し、培養物中にジペプチドを生成、蓄積せしめ、該培養物から該ジペプチドを採取することを特徴とする、ジペプチドの製造法。本発明の目的は、カルノシンを高効率に生成する蛋白質、および該蛋白質または該蛋白質を生産する能力を有する微生物を用いたカルノシンの製造法を提供することにある。本発明は、以下の[1]~[9]に関する。[1]配列番号1で表されるアミノ酸配列において、112番目および378番目より選ばれる1つ以上のアミノ酸残基が他のアミノ酸残基に置換されたアミノ酸配列からなる蛋白質。[2]配列番号1で表されるアミノ酸配列からなる蛋白質のホモログ蛋白質以下、YwfEホモログ蛋白質という。のアミノ酸配列において、YwfEホモログ蛋白質のアミノ酸配列と配列番号1で表されるアミノ酸配列とをアライメントしたときに、YwfEホモログ蛋白質のアミノ酸配列において、配列番号1の112番目および378番目より選ばれるアミノ酸残基に対応するアミノ酸残基のうち、一つ以上のアミノ酸残基が他のアミノ酸残基に置換されたアミノ酸配列からなる蛋白質。[3]他のアミノ酸残基が、112番目はValおよび378番目はArgである[1]または[2]記載の蛋白質。[4]112番目のアミノ酸残基がValであり、かつ378番目のアミノ酸残基がArgであるアミノ酸配列からなる[1]または[2]に記載の蛋白質。[5][1]~[4]のいずれかに記載の蛋白質をコードするDNA。[6][5]記載のDNAを含有する組換え体DNA。[7][6]記載の組換え体DNAで宿主細胞を形質転換して得られる形質転換体。[8][1]~[4]のいずれか記載の蛋白質または該蛋白質を生産する能力を有する宿主細胞の培養物若しくは該培養物の処理物、1種または2種のL-アミノ酸またはβアミノ酸を水性媒体中に存在せしめ、該媒体中にジペプチドを生成、蓄積させ、該媒体から該ジペプチドを採取することを特徴とするジペプチドの製造法。[9][1]~[4]のいずれか記載の蛋白質を生産する能力を有する宿主細胞を培地に培養し、培養物中にジペプチドを生成、蓄積せしめ、該培養物から該ジペプチドを採取することを特徴とする、ジペプチドの製造法。本発明によれば、カルノシンを高効率に生成する蛋白質、および該蛋白質または該蛋白質を生産する能力を有する微生物を用いたカルノシンの製造法を提供することができる。1.本発明の蛋白質本発明の蛋白質としては、以下の1~3記載のいずれかの蛋白質をあげることができる。1配列番号1で表されるアミノ酸配列において、112番目および378番目より選ばれる1つ以上のアミノ酸残基が他のアミノ酸残基に置換されたアミノ酸配列からなる蛋白質。2YwfEホモログ蛋白質のアミノ酸配列において、YwfEホモログ蛋白質のアミノ酸配列と配列番号1で表されるアミノ酸配列とをアライメントしたときに、YwfEホモログ蛋白質のアミノ酸配列において、配列番号1の112番目および378番目より選ばれるアミノ酸残基に対応するアミノ酸残基のうち、一つ以上のアミノ酸残基が他のアミノ酸残基に置換されたアミノ酸配列からなる蛋白質。3他のアミノ酸残基が、112番目はValおよび378番目はArgである1または2記載の蛋白質。YwfEホモログ蛋白質とは、配列番号1で表されるアミノ酸配列と高い同一性を有するアミノ酸配列からなり、かつジペプチド合成酵素活性を有する蛋白質をいう。配列番号1で表されるアミノ酸配列と高い同一性を有するアミノ酸配列を有するとは、配列番号1で表されるアミノ酸配列とYwfEホモログ蛋白質のアミノ酸配列とが、少なくとも80以上、好ましくは85以上、より好ましくは90以上、さらに好ましくは95以上、最も好ましくは98以上の同一性を有することをいう。YwfEホモログ蛋白質の具体例としては、配列番号2で表されるBacillussubtilisのBacD、配列番号3で表されるBacillusamyloliquefaciensFZB42のBacD、配列番号4で表されるBacillusamyloliquefaciensのBacD、配列番号5で表されるBacilluspumilusATCC7061のBacD、配列番号6で表されるBacilluspumilusSAFR032のBacD等をあげることができる。配列番号1で表されるアミノ酸配列と、YwfEホモログ蛋白質のアミノ酸配列とのアライメントは、公知のアライメントプログラムClustalWNucelicAcidsResearch224673を用いて作成することができる。ClustalWは、httpwwwebiacukclustalwより利用することができる。ClustalWを用いてアライメントを作成する際のパラメータは、例えばデフォルトの値を用いる。本発明の蛋白質としてより好ましくは、上記1~3記載の蛋白質のアミノ酸配列において、112番目のアミノ酸残基がValであり、かつ、378番目のアミノ酸残基がArgであるアミノ酸配列からなる蛋白質を挙げることができる。2.本発明のDNA本発明のDNAとしては、上記1に記載の本発明の蛋白質をコードするDNAをあげることができる。3.本発明の形質転換体本発明の蛋白質をコードするDNAで形質転換された形質転換体としては、上記2のDNAを含む組換え体DNAを用い、宿主細胞を公知の方法で形質転換して得られる形質転換体をあげることができる。宿主細胞としては、原核生物、酵母、動物細胞、昆虫細胞等、植物細胞等いずれであってもよいが、好ましくは細菌等の原核生物、より好ましくはエシェリヒア属、セラチア属、バチルス属、ブレビバクテリウム属、コリネバクテリウム属、ミクロバクテリウム属、シュードモナス属等に属する微生物をあげることができる。4.本発明のDNAの調製1ジペプチド合成酵素活性を有する蛋白質をコードするDNAの取得ジペプチド合成酵素活性を有する蛋白質をコードするDNAは、例えば配列番号1で表されるアミノ酸配列からなる蛋白質をコードするDNAまたはYwfEホモログ蛋白質をコードするDNAの塩基配列に基づき設計することができるプローブを用い、Bacillussubtilis168またはYwfEホモログ蛋白質をコードするDNAを有する微生物の染色体DNAライブラリーに対するサザンハイブリダイゼーションにより、または配列番号1で表されるアミノ酸配列からなる蛋白質をコードするDNAもしくはYwfEホモログ蛋白質をコードするDNAの塩基配列に基づき設計することができるプライマーDNAを用いた、Bacillussubtilis168もしくはYwfEホモログ蛋白質をコードするDNAを有する微生物の染色体DNAを鋳型としたPCRPCRProtocolsAcademicPressにより取得することができる。YwfEホモログ蛋白質をコードするDNAの塩基配列は、上記1のYwfEホモログ蛋白質のアミノ酸配列をもとに、またはそれらのGenBankAccessionNumberをもとにデータベースを検索し、容易に取得することができる。また、各種の遺伝子配列データベースに対して配列番号1で表されるアミノ酸配列をコードするDNAの塩基配列と少なくとも80以上、好ましくは85以上、より好ましくは90以上、さらに好ましくは95以上、最も好ましくは98以上の同一性を有する配列を検索し、該検索によって得られた塩基配列に基づき、該塩基配列を有する生物の染色体DNA、cDNAライブラリー等から上記した方法によりYwfEホモログ蛋白質をコードするDNAを取得することもできる。取得したDNAをそのまま、あるいは適当な制限酵素などで切断し、常法によりベクターに組み込み、得られた組換え体DNAを宿主細胞に導入した後、通常用いられる塩基配列解析方法、例えばジデオキシ法ProcNatlAcadSciUSA745463、あるいはABI3700DNAアナライザーアプライドバイオシステムズ社製等の塩基配列分析装置を用いて分析することにより、該DNAの塩基配列を決定することができる。塩基配列を決定した結果、取得されたDNAが部分長であった場合は、該部分長DNAをプローブに用いた、染色体DNAライブラリーに対するサザンハイブリダイゼーション法等により、全長DNAを取得することができる。更に、決定されたDNAの塩基配列に基づいて、パーセプティブバイオシステムズ社製8905型DNA合成装置等を用いて化学合成することにより目的とするDNAを調製することもできる。上記において、YwfEホモログ蛋白質をコードするDNAとしては、好ましくは配列番号7で表されるBacillusamyloliquefaciensのbacDで表される塩基配列からなるDNAをあげることができる。2本発明のDNAの調製本発明のDNAは、配列番号1で表されるアミノ酸配列からなる蛋白質をコードするDNAを用いて、該アミノ酸配列の112番目または378番目のアミノ酸残基のうち、1つ以上のアミノ酸残基をコードする部分の塩基配列に、例えばモレキュラークローニング第3版およびカレントプロトコールズインモレキュラーバイオロジー等に記載された部位特異的変異導入法により変異を導入し、他のアミノ酸をコードする塩基配列に置換することにより取得することができる。また、同様の方法により、YwfEのホモログ蛋白質をコードするDNAを用いて、配列番号1で表されるアミノ酸配列と、YwfEのホモログ蛋白質とを上記1の方法によってアライメントしたときに、YwfEのホモログ蛋白質のアミノ酸配列において、配列番号1の112番目または378番目のアミノ酸残基に対応するアミノ酸残基のうち、1つ以上のアミノ酸残基をコードする部分の塩基配列に変異を導入することにより取得することができる。上記のようにして取得されるDNAとしては、例えば、pQE60ywfE、pQM99E11等が有するジペプチド合成酵素活性を有する蛋白質をコードするDNAをあげることができる。5.本発明の形質転換体の製造本発明の形質転換体としては、本発明のDNAをベクターDNAに組み込んで得られる組換え体DNAを宿主細胞に導入して得られる形質転換体をあげることができる。本発明のDNAを組み込むベクターとしては、pBluescriptIIKSストラタジーン社製、pDIRECTNucleicAcidsRes186069、pCRScriptAmpSKストラタジーン社製、pT7Blueノバジェン社製、pCRIIインビトロジェン社製、pCRTRAPジーンハンター社製、pQE60キアゲン社製等をあげることができる。宿主細胞としては、エシェリヒア属に属する微生物などをあげることができる。エシェリヒア属に属する微生物としては、例えば、エシェリヒアコリXL1Blue、エシェリヒアコリXL2Blue、エシェリヒアコリDH1、エシェリヒアコリDH5α、エシェリヒアコリMC1000、エシェリヒアコリATCC12435、エシェリヒアコリW1485、エシェリヒアコリJM109、エシェリヒアコリHB101、エシェリヒアコリNo49、エシェリヒアコリW3110、エシェリヒアコリNY49、エシェリヒアコリMP347、エシェリヒアコリNM522、エシェリヒアコリBL21、エシェリヒアコリME8415等をあげることができる。組換え体DNAの導入方法としては、上記宿主細胞へDNAを導入する方法であればいずれも用いることができ、例えば、カルシウムイオンを用いる方法ProcNatlAcadSciUSA692110、プロトプラスト法特開昭63248394、エレクトロポレーション法NucleicAcidsRes166127等をあげることができる。上記方法によって得られる本発明の形質転換体としては、例えば、リプレッサー蛋白LacIを発現するプラスミドpREP4を有するエシェリヒアコリDH5αpREP4をpQE60ywfE、pQM99E11等を用いて形質転換して得られる形質転換体をあげることができる。6本発明の蛋白質の製造法1本発明の蛋白質を生産する形質転換体の製造本発明のDNAをもとにして、必要に応じて、本発明の蛋白質をコードする部分を含む適当な長さのDNA断片を調製する。また、該蛋白質をコードする部分の塩基配列を、宿主の発現に最適なコドンとなるように、塩基を置換することにより、該蛋白質の生産効率が向上した形質転換体を取得することができる。該組換え体DNAを、該発現ベクターに適合した宿主細胞に導入することにより、本発明の蛋白質を生産する形質転換体を得ることができる。宿主細胞としては、細菌、酵母、動物細胞、昆虫細胞等、植物細胞等、目的とする遺伝子を発現できるものであればいずれも用いることができる。発現ベクターとしては、上記宿主細胞において自律複製可能ないしは染色体中への組込が可能で、本発明のDNAを転写できる位置にプロモーターを含有しているものが用いられる。細菌等の原核生物を宿主細胞として用いる場合は、本発明のDNAを有する組換え体DNAは、原核生物中で自律複製可能であると同時に、プロモーター、リボソーム結合配列、本発明のDNA、転写終結配列より構成された組換え体DNAであることが好ましい。プロモーターを制御する遺伝子が含まれていてもよい。発現ベクターとしては、pColdI、pCDF1b、pRSF1bいずれもノバジェン社製、pMALc2xニューイングランドバイオラブス社製、pGEX4T1ジーイーヘルスケアバイオサイエンス社製、pTrcHisインビトロジェン社製、pSE280インビトロジェン社製、pGEMEX1プロメガ社製、pQE30キアゲン社製、pQE60キアゲン社製、pET3ノバジェン社製、pKYP10特開昭58110600、pKYP200AgricBiolChem48669、pLSA1AgricBiolChem53277、pGEL1ProcNatlAcadSciUSA824306、pBluescriptIISK、pBluescriptIIKSストラタジーン社製、pTrS30エシェリヒアコリJM109pTrS30より調製、pTrS32エシェリヒアコリJM109pTrS32より調製、pPAC31、pUC19Gene33103、pSTV28、pUC118タカラバイオ社製、pPA1特開昭63233798、pGHA2エシェリヒアコリIGHA2FERMB400より調製、特開昭60221091、pGKA2エシェリヒアコリIGKA2FERMBP6798より調製、特開昭60221091、pTerm2US4686191、US4939094、US5160735、pSupex、pUB110、pTP5、pC194、pEG400JBacteriol1722392、pCG1特開昭57134500、pCG2特開昭5835197、pCG4特開昭57183799、pCG11特開昭57134500、pCG116、pCE54、pCB101いずれも特開昭58105999、pRI109再表200044886、pCE51、pCE52、pCE53[いずれもMolecularandGeneralGenetics196175]等をあげることができる。プロモーターとしては、大腸菌等の宿主細胞中で機能するものであればいかなるものでもよい。例えば、trpプロモーターPtrp、lacプロモーターPlac、PLプロモーター、PRプロモーター、PSEプロモーター等の、大腸菌やファージ等に由来するプロモーター、SPO1プロモーター、SPO2プロモーター、penPプロモーター等をあげることができる。またPtrpを2つ直列させたプロモーターPtrp×2、tacプロモーター、lacT7プロモーター、letIプロモーターのように人為的に設計改変されたプロモーター等も用いることができる。リボソーム結合配列であるシャイン-ダルガノShineDalgarno配列と開始コドンとの間を適当な距離例えば6~18塩基に調節したプラスミドを用いることが好ましい。組換え体DNAには、本発明のDNAの発現に転写終結配列は必ずしも必要ではないが、構造遺伝子の直下に転写終結配列を配置することが好ましい。このような組換え体DNAとしては、例えば、pQE60ywfE、pQM99E11等をあげることができる。原核生物としては、エシェリヒア属、セラチアSerratia属、バチルスBacillus属、ブレビバクテリウムBrevibacterium属、コリネバクテリウムCorynebacterium属、ミクロバクテリウムMicrobacterium属、シュードモナスPseudomonas属等に属する微生物、例えば、エシェリヒアコリXL1Blue、エシェリヒアコリXL2Blue、エシェリヒアコリDH1、エシェリヒアコリDH5α、エシェリヒアコリNM522、エシェリヒアコリMC1000、エシェリヒアコリKY3276、エシェリヒアコリW1485、エシェリヒアコリJM109、エシェリヒアコリHB101、エシェリヒアコリNo49、エシェリヒアコリW3110、エシェリヒアコリNY49、セラチアフィカリアSerratiaficaria、セラチアフォンティコラSerratiafonticola、セラチアリケファシエンスSerratialiquefaciens、セラチアマルセッセンスSerratiamarcescens、バチルスサチラスBacillussubtilis、バチルスアミロリケファシエンスBacillusamyloliquefaciens、ブレビバクテリウムイマリオフィラムBrevibacteriumimmariophilumATCC14068、ブレビバクテリウムサッカロリティカムBrevibacteriumsaccharolyticumATCC14066、コリネバクテリウムアンモニアゲネスCorynebacteriumammoniagenes、コリネバクテリウムグルタミカムCorynebacteriumglutamicumATCC13032、コリネバクテリウムグルタミカムATCC14067、コリネバクテリウムグルタミカムATCC13869、コリネバクテリウムアセトアシドフィラムCorynebacteriumacetoacidophilumATCC13870、ミクロバクテリウムアンモニアフィラムMicrobacteriumammoniaphilumATCC15354、シュードモナスエスピーPseudomonasspD0110等をあげることができるが、好ましくはエシェリヒア属またはコリネバクテリウム属に属する微生物、より好ましくはエシェリヒアコリXL1Blue、エシェリヒアコリXL2Blue、エシェリヒアコリDH1、エシェリヒアコリDH5α、エシェリヒアコリMC1000、エシェリヒアコリMM294、エシェリヒアコリW1485、エシェリヒアコリJM109、エシェリヒアコリHB101、エシェリヒアコリNo49、エシェリヒアコリW3110、エシェリヒアコリNY49、エシェリヒアコリGI698、コリネバクテリウムアンモニアゲネスATCC6872、コリネバクテリウムアンモニアゲネスATCC21170、コリネバクテリウムグルタミカムATCC13032、コリネバクテリウムグルタミカムATCC21171等をあげることができる。組換えベクターの導入方法としては、上記宿主細胞へDNAを導入する方法であればいずれも用いることができ、例えば、カルシウムイオンを用いる方法ProcNatlAcadSciUSA692110、プロトプラスト法特開昭57186492、特開昭5718649、電気穿孔法[例えば、JournalofBacteriology1754096、ApplMicrobiolBiotechnol52541]、Gene17107およびMolecularGeneralGenetics168111に記載の方法等をあげることができる。酵母菌株を宿主細胞として用いる場合には、発現ベクターとして、例えば、YEp13ATCC37115、YEp24ATCC37051、YCp50ATCC37419、pHS19、pHS15等を用いることができる。プロモーターとしては、酵母菌株中で機能するものであればいずれのものを用いてもよく、例えば、PHO5プロモーター、PGKプロモーター、GAPプロモーター、ADHプロモーター、gal1プロモーター、gal10プロモーター、ヒートショックポリペプチドプロモーター、MFα1プロモーター、CUP1プロモーター等のプロモーターをあげることができる。宿主細胞としては、サッカロマイセス属、シゾサッカロマイセス属、クルイベロミセス属、トリコスポロン属、シワニオミセス属、ピチア属、キャンディダ属等に属する酵母菌株をあげることができ、具体的には、サッカロマイセスセレビシエSaccharomycescerevisiae、シゾサッカロマイセスポンベSchizosaccharomycespombe、クリュイベロマイセスラクティスKluyveromyceslactis、トリコスポロンプルランスTrichosporonpullulans、シワニオマイセスアルビウスSchwanniomycesalluvius、ピヒアパストリスPichiapastoris、キャンディダユーティリスCandidautilis等をあげることができる。組換え体DNAの導入方法としては、酵母にDNAを導入する方法であればいずれも用いることができ、例えば、エレクトロポレーション法MethodsEnzymol194182、スフェロプラスト法ProcNatlAcadSciUSA814889、酢酸リチウム法JBacteriol153163等をあげることができる。2本発明の蛋白質の製造法上記1の方法で得られる形質転換体を培地に培養し、培養物中に本発明の蛋白質を生成、蓄積させ、該培養物から採取することにより、該蛋白質を製造することができる。本発明の蛋白質を製造するための上記形質転換体の宿主としては、原核生物、酵母、動物細胞、昆虫細胞等、植物細胞等いずれであってもよいが、好ましくは細菌等の原核生物、より好ましくはエシェリヒア属、セラチア属、バチルス属、ブレビバクテリウム属、コリネバクテリウム属、ミクロバクテリウム属、シュードモナス属等に属する微生物をあげることができる。酵母、動物細胞、昆虫細胞または植物細胞により発現させた場合には、糖あるいは糖鎖が付加された蛋白質を得ることができる。上記形質転換体を培地に培養する方法は、宿主の培養に用いられる通常の方法に従って行うことができる。エシェリヒアコリ等の原核生物あるいは酵母等の真核生物を宿主として得られた形質転換体を培養する培地としては、該生物が資化し得る炭素源、窒素源、無機塩類等を含有し、形質転換体の培養を効率的に行える培地であれば天然培地、合成培地のいずれを用いてもよい。炭素源としては、該生物が資化し得るものであればよく、グルコース、フラクトース、スクロース、これらを含有する糖蜜、デンプンあるいはデンプン加水分解物等の炭水化物、酢酸、プロピオン酸等の有機酸、エタノール、プロパノール等のアルコール類等を用いることができる。窒素源としては、アンモニア、塩化アンモニウム、硫酸アンモニウム、酢酸アンモニウム、リン酸アンモニウム等の無機酸もしくは有機酸のアンモニウム塩、その他の含窒素化合物、並びに、ペプトン、肉エキス、酵母エキス、コーンスチープリカー、カゼイン加水分解物、大豆粕および大豆粕加水分解物、各種発酵菌体、およびその消化物等を用いることができる。無機塩としては、リン酸第一カリウム、リン酸第二カリウム、リン酸マグネシウム、硫酸マグネシウム、塩化ナトリウム、硫酸第一鉄、硫酸マンガン、硫酸銅、炭酸カルシウム等を用いることができる。培養は、通常振盪培養または深部通気攪拌培養等の好気的条件下で行う。培養温度は15~40°Cがよく、培養時間は、通常5時間~7日間である。培養中pHは30~11に保持する。pHの調整は、無機または有機の酸、アルカリ溶液、尿素、炭酸カルシウム、アンモニア等を用いて行う。また、培養中必要に応じて、アンピシリンやテトラサイクリン等の抗生物質を培地に添加してもよい。プロモーターとして誘導性のプロモーターを用いた発現ベクターで形質転換した微生物を培養するときには、必要に応じてインデューサーを培地に添加してもよい。例えば、lacプロモーターを用いた発現ベクターで形質転換した微生物を培養するときにはイソプロピル-β-D-チオガラクトピラノシド等を、trpプロモーターを用いた発現ベクターで形質転換した微生物を培養するときにはインドールアクリル酸等を培地に添加してもよい。培養は、通常pH6~8、25~40°C、5CO2存在下等の条件下で1~7日間行う。また、培養中必要に応じて、カナマイシン、ペニシリン、ストレプトマイシン等の抗生物質を培地に添加してもよい。本発明の蛋白質の生産方法としては、宿主細胞内に生産させる方法、宿主細胞外に分泌させる方法、あるいは宿主細胞外膜上に生産させる方法があり、選択した方法に応じて、生産させる蛋白質の構造を変えることができる。本発明の蛋白質が宿主細胞内あるいは宿主細胞外膜上に生産される場合、ポールソンらの方法JBiolChem,26417619、ロウらの方法ProcNatlAcadSciUSA868227、GenesDevelop412881990、または特開平05336963、WO9423021等に記載の方法を準用することにより、該蛋白質を宿主細胞外に積極的に分泌させることができる。すなわち、遺伝子組換えの手法を用いて、本発明の蛋白質の活性部位を含む蛋白質の手前にシグナルペプチドを付加した形で生産させることにより、該蛋白質を宿主細胞外に積極的に分泌させることができる。また、特開平2227075に記載されている方法に準じて、ジヒドロ葉酸還元酵素遺伝子等を用いた遺伝子増幅系を利用して生産量を上昇させることもできる。本発明の形質転換体により製造された蛋白質を単離精製するためには、通常の酵素の単離精製法を用いることができる。例えば本発明の蛋白質が、細胞内に溶解状態で発現した場合には、培養終了後、細胞を遠心分離により回収し、水系緩衝液にけん濁後、超音波破砕機、フレンチプレス、マントンガウリンホモゲナイザー、ダイノミル等により細胞を破砕し、無細胞抽出液を得る。該無細胞抽出液を遠心分離することにより得られる上清から、通常の酵素の単離精製法、即ち、溶媒抽出法、硫安等による塩析法、脱塩法、有機溶媒による沈殿法、ジエチルアミノエチルDEAE-セファロース、DIAIONHPA75三菱化学社製等のレジンを用いた陰イオン交換クロマトグラフィー法、SSepharoseFFアマシャムバイオサイエンス社製等のレジンを用いた陽イオン交換クロマトグラフィー法、ブチルセファロース、フェニルセファロース等のレジンを用いた疎水性クロマトグラフィー法、分子篩を用いたゲルろ過法、アフィニティークロマトグラフィー法、クロマトフォーカシング法、等電点電気泳動等の電気泳動法等の手法を単独あるいは組み合わせて用い、精製標品を得ることができる。また、該蛋白質が細胞内に不溶体を形成して発現した場合は、同様に細胞を回収後、破砕し、遠心分離を行うことにより、沈殿画分として蛋白質の不溶体を回収する。回収した蛋白質の不溶体を蛋白質変性剤で可溶化する。該可溶化液を希釈または透析し、該可溶化液中の蛋白質変性剤の濃度を下げることにより、該蛋白質を正常な立体構造に戻す。該操作の後、上記と同様の単離精製法により該蛋白質の精製標品を得ることができる。本発明の蛋白質、あるいは該蛋白質に糖鎖の付加された蛋白質等の誘導体が細胞外に分泌された場合には、培養上清に該蛋白質あるいは該蛋白質の誘導体を回収することができる。即ち、該培養物を上記と同様の遠心分離等の手法により処理することにより培養上清を取得し、該培養上清から、上記と同様の単離精製法を用いることにより、精製標品を得ることができる。このようにして取得される蛋白質として、上記1に記載の蛋白質をあげることができる。また、本発明の蛋白質を他の蛋白質との融合蛋白質として生産し、融合した蛋白質に親和性をもつ物質を用いたアフィニティークロマトグラフィーを利用して精製することもできる。例えば、ロウらの方法ProcNatlAcadSciUSA868227、GenesDevelop412881990、特開平5336963、WO9423021に記載の方法に準じて、本発明の蛋白質をプロテインAとの融合蛋白質として生産し、イムノグロブリンGを用いるアフィニティークロマトグラフィーにより精製することができる。また、本発明の蛋白質をFlagペプチドとの融合蛋白質として生産し、抗Flag抗体を用いるアフィニティークロマトグラフィーProcNatlAcadSciUSA868227、GenesDevelop412881990や、ポリヒスチジンとの融合蛋白質として生産し、ポリヒスチジンと高親和性を有する金属配位レジンを用いるアフィニティークロマトグラフィーによって精製することもできる。更に、該蛋白質自身に対する抗体を用いたアフィニティークロマトグラフィーで精製することもできる。上記で取得された蛋白質のアミノ酸配列情報を基に、Fmoc法フルオレニルメチルオキシカルボニル法、tBoc法t-ブチルオキシカルボニル法等の化学合成法により、本発明の蛋白質を製造することができる。また、AdvancedChemTech社、パーキンエルマー社、Pharmacia社、ProteinTechnologyInstrument社、SynthecellVega社、アプライドバイオシステムズ社、島津製作所等のペプチド合成機を利用して化学合成することもできる。7.本発明のジペプチドの製造法上記3の微生物または形質転換体の培養物もしくは該培養物の処理物、または上記1の本発明の蛋白質と1種以上、好ましくは2種のアミノ酸を水性媒体中に存在せしめ、該媒体中にジペプチドを生成、蓄積させ、該媒体から該ジペプチドを採取することにより、ジペプチドを製造することができる。1本発明の蛋白質を酵素源として用いるジペプチドの製造法本発明の製造法において、酵素源として本発明の蛋白質を用いる場合、基質に用いられるアミノ酸としては、LアラニンLAla、LグルタミンLGln、Lグルタミン酸LGlu、LバリンLVal、Lロイシン、Lイソロイシン、LプロリンLPro、Lフェニルアラニン、LトリプトファンLTrp、LメチオニンLMet、LセリンLSer、LスレオニンLThr、LシステインLCys、LアスパラギンLAsn、LチロシンLTyr、LリジンLLys、LアルギニンLArg、LヒスチジンLHis、Lアスパラギン酸LAsp、LαAminobutyricacid、LAzaserine、Ltheanine、L4Hydroxyproline、L3Hydroxyproline、LOrnithine、LCitrulline、L6diazo5oxonorleucine、グリシンGlyおよびβ-アラニンβAlaからなる群より選ばれる1種または2種のアミノ酸の組み合わせを挙げることができる。上記製造法に用いられる、より好ましいアミノ酸としては、βAlaとGly、LAla、LGln、LGlu、LVal、LLeu、LIle、LPro、LPhe、LTrp、LMet、LSer、LThr、LCys、LAsn、LTyr、LLys、LArg、LHisおよびLAspからなる群より選ばれる1種のアミノ酸の組み合わせ、特に好ましくは、βAlaとLHisの組み合わせをあげることができる。上記製造法において、本発明の蛋白質は、基質として用いるアミノ酸1mgあたり001~100mg、好ましくは01mg~10mg添加する。上記製造法において、基質として用いるアミノ酸は、01~500gL、好ましくは02~200gLの濃度になるように水性媒体中に初発または反応途中に添加する。上記製造法において、エネルギー源としてATPを用いることができ、ATPは、05mmol~10molLの濃度で用いる。上記製造法で用いられる水性媒体としては、ジペプチドの生成反応を阻害しない限り、いかなる成分、組成の水性媒体であってもよく、例えば、水、りん酸塩、炭酸塩、酢酸塩、ほう酸塩、クエン酸塩、トリスなどの緩衝液などをあげることができる。また、メタノール、エタノールなどのアルコール類、酢酸エチルなどのエステル類、アセトンなどのケトン類、アセトアミドなどのアミド類を含有していてもよい。ジペプチドの生成反応は水性媒体中、pH5~11、好ましくはpH6~10、20~50°C、好ましくは25~45°Cの条件で2~150時間、好ましくは6~120時間行う。上記方法で製造されるジペプチドとしては、式IR1R2IただしR1はLAla、LGln、LGlu、LVal、LLeu、LIle、LPro、LPhe、LTrp、LMet、LSer、LThr、LCys、LAsn、LTyr、LLys、LArg、LHis、LAsp、LαAminobutyricacid、LAzaserine、Ltheanine、L4Hydroxyproline、L3Hydroxyproline、LOrnithine、LCitrulline、L6diazo5oxonorleucine、GlyおよびβAlaからなる群より選ばれる1種であり、R2はLAla、LGln、LGlu、LVal、LLeu、LIle、LPro、LPhe、LTrp、LMet、LSer、LThr、LCys、LAsn、LTyr、LLys、LArg、LHis、LAsp、LαAminobutyricacid、LAzaserine、Ltheanine、L4Hydroxyproline、L3Hydroxyproline、LOrnithine、LCitrulline、L6diazo5oxonorleucine、GlyおよびβAlaからなる群より選ばれる1種であるで表される2つのアミノ酸が連結したジペプチド、より好ましくは、式IただしR1はβAlaであり、R2はLAla、LGln、LGlu、LVal、LLeu、LIle、LPro、LPhe、LTrp、LMet、LSer、LThr、LCys、LAsn、LTyr、LLys、LArg、LHis、LAspおよびGlyからなる群より選ばれる1種であるで表される2つのアミノ酸またはその誘導体が連結したジペプチドまたはその誘導体、特に好ましくは、式Iただし、R1はβAlaであり、R2はLHisであるで表される2つのアミノ酸が連結したジペプチドをあげることができる。2微生物または形質転換体の培養物もしくは培養物の処理物を酵素源として用いるジペプチドの製造法本発明の製造法において酵素源として用いられる微生物または形質転換体の培養物としては、該微生物または形質転換体を上記6の培養方法で培養して得られる培養物をあげることができる。微生物または形質転換体の培養物の処理物としては、該培養物の濃縮物、該培養物の乾燥物、該培養物を遠心分離、または濾過等して得られる菌体、該菌体の乾燥物、該菌体の凍結乾燥物、該菌体の界面活性剤処理物、該菌体の溶媒処理物、該菌体の酵素処理物、および該菌体の固定化物などの酵素源として該培養物と同様の機能を保持する生菌体を含んでいるもの、並びに該菌体の超音波処理物、該菌体の機械的摩砕処理物、および当該処理した菌体から得られる粗酵素抽出物などをあげることができる。形質転換体または微生物の培養物もしくは培養物の処理物を酵素源として用いる場合、基質に用いられる1種以上のアミノ酸としては、上記1と同様のアミノ酸をあげることができる。該酵素源の量は、当該酵素源の比活性等により異なるが、例えば、基質として用いるアミノ酸1mgあたり湿菌体重量として5~1000mg、好ましくは10~400mg添加する。基質として用いるアミノ酸は、上記1と同じように水性媒体中に添加することができる。上記1と同様、ATPを水性媒体中に存在せしめ、エネルギー源として用いることができる。水性媒体としては、上記1の媒体を用いることができ、加えて酵素源に使用する微生物または形質転換体の培養物の培養上清も水性媒体として用いることもできる。ジペプチドの生成反応の反応条件は、上記1と同様の条件をあげることができる。上記方法で製造されるジペプチドとしては、上記1と同様のジペプチドをあげることができる。上記1および2の製造法において、水性媒体中に生成、蓄積したジペプチドの採取は、活性炭やイオン交換樹脂などを用いる通常の方法あるいは、有機溶媒による抽出、結晶化、薄層クロマトグラフィー、高速液体クロマトグラフィー等により行うことができる。3発酵法によるジペプチドの製造法上記4の方法により得られる組換え体DNAで宿主細胞を形質転換して得られる形質転換体を培地に培養し、培養物中にジペプチドを生成、蓄積させ、該培養物からジペプチドを採取することにより、ジペプチドを製造することができる。宿主細胞は、LAla、LGln、LGlu、LVal、LLeu、LIle、LPro、LPhe、LTrp、LMet、LSer、LThr、LCys、LAsn、LTyr、LLys、LArg、LHis、LAsp、LαAminobutyricacid、LAzaserine、Ltheanine、L4Hydroxyproline、L3Hydroxyproline、LOrnithine、LCitrulline、L6diazo5oxonorleucine、GlyおよびβAlaからなる群より選ばれる1種または2種のアミノ酸を生産する能力を有する微生物であればいずれの微生物を用いてもよいが、より好ましくは、βAlaとLAla、LGln、LGlu、LVal、LLeu、LIle、LPro、LPhe、LTrp、LMet、LSer、LThr、LCys、LAsn、LTyr、LLys、LArg、LHis、LAspおよびGlyから選ばれる1種のアミノ酸を生産する能力を有するエシェリヒア属に属する微生物を、特に好ましくは、βAlaとLHisを生産する能力を有するエシェリヒア属に属する微生物を用いることができる。ただし、本願発明の製造法により、2種の異なるアミノ酸からなるジペプチドを製造する場合であって、用いられる形質転換体が該ジペプチドを構成するアミノ酸うちの1種のアミノ酸を生産する能力しか有していない場合、本発明で用いられる培地に、該形質転換体が生産することができない残りの1種のアミノ酸を添加してもよい。このとき添加するアミノ酸の量は、通常0.5g/L~100g/L、好ましくは2g/L~50g/Lである。該形質転換体を培地に培養する方法は、微形質転換体の培養に用いられる通常の方法に従って行うことができる。すなわち、該形質転換体が資化し得る炭素源、窒素源、無機塩類等を含有し、該形質転換体の培養を効率的に行える培地であれば天然培地、合成培地のいずれも用いることができる。炭素源としては、該形質転換体が資化し得るものであればよく、グルコース、フラクトース、スクロース、これらを有する糖蜜、デンプンあるいはデンプン加水分解物等の炭水化物、酢酸、プロピオン酸等の有機酸、エタノール、プロパノール等のアルコール類等を用いることができる。窒素源としては、アンモニア、塩化アンモニウム、硫酸アンモニウム、酢酸アンモニウム、リン酸アンモニウム等の無機酸もしくは有機酸のアンモニウム塩、その他の含窒素化合物、並びに、ペプトン、肉エキス、酵母エキス、コーンスティープリカー、カゼイン加水分解物、大豆粕および大豆粕加水分解物、各種発酵菌体、およびその消化物等を用いることができる。無機塩としては、リン酸第一カリウム、リン酸第二カリウム、リン酸マグネシウム、硫酸マグネシウム、塩化ナトリウム、硫酸第一鉄、硫酸マンガン、硫酸銅、炭酸カルシウム等を用いることができる。培養は、通常振盪培養または深部通気攪拌培養等の好気的条件下で行う。培養温度は15~40°Cがよく、培養時間は、通常5時間~7日間である。培養中pHは3.0~9.0に保持する。pHの調整は、無機または有機の酸、アルカリ溶液、尿素、炭酸カルシウム、アンモニア等を用いて行う。また、培養中必要に応じて、アンピシリンやテトラサイクリン等の抗生物質を培地に添加してもよい。プロモーターとして誘導性のプロモーターを用いた発現ベクターで形質転換した形質転換体を培養するときには、必要に応じてインデューサーを培地に添加してもよい。例えば、lacプロモーターを用いた発現ベクターで形質転換した形質転換体を培養するときにはイソプロピル-β-D-チオガラクトピラノシド等を、trpプロモーターを用いた発現ベクターで形質転換した形質転換体を培養するときにはインドールアクリル酸等を培地に添加してもよい。上記方法で製造されるジペプチドまたはその誘導体としては、上記1と同様のジペプチドまたはその誘導体をあげることができる。培養物中に生成、蓄積したジペプチドの採取は、活性炭やイオン交換樹脂などを用いる通常の方法あるいは、有機溶媒による抽出、結晶化、薄層クロマトグラフィー、高速液体クロマトグラフィー等により行うことができる。以下に、実施例を示すが、本発明は下記実施例に限定されるものではない。バチルスサチリス168株由来のアミノ酸リガーゼをコードするDNAywfEのクローニングバチルスサチリス168株をLB培地10gLバクトトリプトン、5gLイーストエキスディフコ社製、5gL塩化ナトリウム、20gLバクトアガーに植菌し30°Cで一晩静置培養した。培養後、常法に従い、該微生物の染色体DNAを単離した。配列番号8および9で表される塩基配列からなる合成DNAをプライマーセットとして用い、バチルスサチリス168株の染色体DNAを鋳型として、PCRを行った。PCRはpyrobestDNAポリメラーゼタカラバイオ社製を用い、添付のプロトコルに従って行った。上記PCRにより、ywfEに相当する約14kbpの断片を取得し、常法に従ってこれを発現ベクターpQE60と連結させ、リプレッサー蛋白LacIを発現するプラスミドpREP4を有するエシェリヒアコリDH5αpREP4を形質転換した。得られた形質転換体はpQE60にywfE断片が挿入された構造を有するプラスミドを保持しており、当該プラスミドをpQE60ywfEと命名した。変異体酵素の調製実施例1で得られたプラスミドpQE60ywfEを鋳型とし、配列番号10および11で表される塩基配列からなる合成DNAをプライマーセットとして用い、エラープローンPCRを行った。PCRは01μgのプラスミドDNA、05μmolLの各プライマーDNA、50unitのtaqDNAポリメラーゼタカラバイオ社製、5μLのtaqDNAポリメラーゼ用X10緩衝液、50μMのMnCl2、200μmolLの各NTPを含む反応液50μLを調製し、96°Cで10秒、56°Cで30秒、72°Cで2分の工程を30回繰り返すことにより行った。上記PCRにより、ywfEに相当する約14kbpの断片を取得し、これをpQE60と連結させ、エシェリヒアコリDH5αpREP4を形質転換した後、得られた形質転換体を100μgLのアンピシリン、および50μgLのカナマイシンを含む01mlのLB培地の入った96穴マルチウェルプレートに接種し30°Cで20時間培養した。該培養液に30グリセロール溶液を005mlずつ添加し、よく混合して80°Cで凍結させこれを保存菌株とした。上記の保存菌株を解凍して100μgLのアンピシリン、および50μgLのカナマイシン、025mMのイソプロピルβDチオガラクトピラノシドIPTGを含む05mlのLB培地の入った96穴マルチウェルプレートに接種し30°Cで20時間培養した。該培養液を遠心分離して湿菌体を取得し、該湿菌体をバグバスターノバジェン社製015mlで懸濁し10分間処理し、該処理液から遠心分離により菌体を除去し、蛋白質の漏出した上清を得た。01M硫酸ニッケルで前処理したキレートレジンChelatingSepharoseTMFastFlowアマシャムバイオサイエンスの懸濁液を96穴フィルタープレートMultiScreenDVMADVN6510ミリポア社製に1wellあたり100μLずつ分注したものを用い、以下のような手順でHisタグ付加組換え酵素を精製した。まず、上記で得た菌体抽出液100μLを、レジンを分注したフィルタープレートに通し、各ウェルを200μLの水で2回洗浄した。次に50mMのMOPS、300mMのNaCl、100mMのイミダゾールを含む溶液を100μL×3回通し、レジンに吸着した夾雑蛋白質を除いた。最後に50mMのMOPS、300mMのNaCl、350mMのイミダゾールを含む溶液を50μL×2回通してHisタグ融合蛋白質を96穴マイクロプレート上に溶出した。得られた酵素溶液の蛋白質量はプロテインアッセイキットバイオラッド社製を用い、添付の説明書の方法に従って測定した。上記の方法で0104mgml程度の変異型酵素溶液を各々約100μLずつ得ることができた。野生型酵素より反応性が高まった変異型酵素の取得実施例2で調製した変異酵素ライブラリーを用い、以下のようにして基質特異性が変化した酵素を探索した。各125mMのβAlaおよびLHisを含む溶液8μL、10mMのATP2Na、100mMのMgSO4、200mMのTrisHClpH85を含む溶液10μL、精製酵素溶液2μLを混合して反応液を調製し、37°Cで2時間ジペプチド合成反応を行った。反応後、リン酸定量試薬ホスファCテストワコー;和光純薬社製150μLを加え、37°C、20分発色反応を行い、750nmにおける吸光度をマイクロプレートリーダーModel3550によって測定した。吸光度をもとに、反応によって生成したリン酸量を計算し、蛋白質量あたりのリン生成量が野生型酵素に比べ大幅に高い酵素を探索した。その結果、野生型酵素では酵素1μgあたり0005のリン酸が生成したのに対し、3300の変異酵素の中の1つでは酵素1μgあたり0037のリン酸が生成し、大幅なジペプチド合成活性の向上が認められた。該変異酵素を99E11と、99E11を発現するプラスミドをpQM99E11と命名した。pQM99E11を用いてエシェリヒアコリDH5αpREP4を形質転換して得られる、変異酵素99E11を高発現するエシェリヒアコリDH5αpREP4pQM99E11をLB培地に塗布し30°Cで一晩生育させた後に、これを025mMのIPTG、100μgLのアンピシリン、50μgLのカナマイシンを含むTB培地12gLバクトトリプトン、24gLイーストエキスディフコ社製、4mLLグリセロール、17mMKH2PO4、72mMK2HPO4に植菌し30°Cで20時間培養した。該培養液を遠心分離して湿菌体を取得し、該湿菌体から、HisTrapアマシャムバイオサイエンス社製を用いて、添付の説明書に従いHisタグ付加組換え型酵素を精製した。精製したHisタグ付加型組換え酵素10μg、100mmolLのTrisHCl、30mmolLのMgSO4、10mmolLのATP2ナトリウム、各30mmolLのβAlaおよびLHisからなる02mLの反応液を調製し、37°Cで2時間ジペプチド合成反応を行った。反応後、生成したカルノシンの蓄積量をBankらの方法[Anal.Biochem.,240,1671996に従って高速液体クロマトグラフィーHPLCにより定量した。結果を表1に示す。上記の表1に示すとおり、変異酵素99E11はβAlaとLHisの組み合わせを基質とするカルノシン生成反応において、野生型酵素より高い活性を示すことがわかった。また、pQM99E11が有するDNA断片について塩基配列を決定したところ、変異酵素99E11のアミノ酸配列には、野生型酵素のアミノ酸配列において112番目のIle残基がVal残基に、378番目のTrp残基がArg残基に置換されていることがわかった。"