"配列番号34~配列番号58からなる配列若しくはそれらに完全に相補的な配列又はそれらのRNA同等物若しくはDNA同等物から構成されるB型インフルエンザウイルスに特異的な少なくとも2つの核酸オリゴマーを含む、組成物。前記核酸オリゴマーが、配列番号38~配列番号43からなる配列から選択される少なくとも1つのオリゴマー、及び、配列番号44~配列番号47からなる配列から選択される少なくとも1つのオリゴマーを含む、請求項1記載の組成物。配列番号48~配列番号58からなる配列から選択される少なくとも1つのオリゴマーをさらに含む、請求項2記載の組成物。前記オリゴマーの少なくとも1つが、少なくとも1つの2’-メトキシRNA基を含む、請求項1記載の組成物。前記オリゴマーの少なくとも1つが、該オリゴマーの5’末端に少なくとも1つのロックされた核酸LNA残基を含む、請求項1記載の組成物。配列番号48~配列番号58からなる配列から選択される前記オリゴマーが、直接的又は間接的に前記オリゴマー配列に結合した検出可能な標識を含む、請求項3記載の組成物。前記標識が均一系アッセイシステムで検出可能である、請求項6記載の組成物。前記B型インフルエンザウイルスに特異的な少なくとも2つの核酸オリゴマーがキットの形態である、請求項1記載の組成物。試料中のB型インフルエンザウイルスの核酸を検出する方法であって、以下の:実質的に等温条件下で増幅産物を産生するために、試料中に含まれるB型インフルエンザウイルス核酸中の標的配列を、インビトロで核酸ポリメラーゼを用いて増幅する工程であって、該B型インフルエンザウイルスの標的配列が、配列番号32若しくは配列番号32の完全な相補体、又はそれらのRNA同等物に含まれる、工程;及び、該増幅産物を検出する工程、を含む、方法。前記B型インフルエンザウイルスの標的配列を増幅する工程で、配列番号38~配列番号43からなる配列から選択される少なくとも1つのオリゴマー、及び、配列番号44~配列番号47からなる配列から選択される1つのオリゴマーを用いる、請求項9記載の方法。前記検出工程で、前記B型インフルエンザウイルスの標的配列の増幅産物を検出するために配列番号48~配列番号58からなる配列から選択される少なくとも1つのプローブを用いる、請求項9記載の方法。内部調節オリゴマーをもたらす工程;該内部調節オリゴマーに含まれる標的配列を増幅する工程;及び、該内部調節オリゴマーから作製される増幅産物を検出する工程であって、それにより、前記方法の増幅工程及び検出工程が適当に行われたことを示す工程をさらに含む、請求項9記載の方法。前記増幅工程の前に、前記B型インフルエンザウイルス核酸を含む試料からインフルエンザウイルス核酸を単離する工程をさらに含む、請求項9記載の方法。試料からB型インフルエンザウイルス核酸を増幅及び検出する方法であって、以下の:請求項1~7のいずれか1項記載の増幅オリゴマー及び検出オリゴマーを用いて増幅反応及び検出反応を実施する工程であって、該増幅産物の検出が該試料中のB型インフルエンザウイルス核酸の存在を示す、工程、を含む、方法。すなわち、感染者を効果的に治療するのに十分な時間内に診断を完了させるため、技術員が病原体に暴露されることが最小限になるように比較的短時間で、A型及びB型インフルエンザウイルスを感度よく特異的に検出する試験に対する要望がある。本明細書に開示される1の態様は、配列番号3~配列番号18及び配列番号21~配列番号31若しくはそれらと完全に相補的な配列又はそれらのDNA同等物からなる配列から構成されるA型インフルエンザウイルスに特異的な少なくとも2つの核酸オリゴマーを含む組成物である。好ましい態様としては、少なくとも1のオリゴマーが配列番号7~配列番号18からなる配列から選択され、少なくとも1のオリゴマーが配列番号21~配列番号24からなる配列から選択される核酸オリゴマーがあげられる。他の好ましい態様としてはまた、配列番号25~配列番号31からなる配列から選択される少なくとも1のオリゴマーがあげられる。好ましい態様では、少なくとも1のオリゴマーには、少なくとも1の2’-メトキシRNA基が含まれ、他の好ましい態様では、少なくとも1のオリゴマーには、オリゴマーの5’末端に少なくとも1のロックされた核酸LNA残基が含まれる。配列番号25~配列番号31からなる配列から選択されるオリゴマーが含まれる好ましい態様では、オリゴマーはまた、オリゴマー配列に直接的又は間接的に結合した検出可能な標識を含む。好ましい標識は、均一系アッセイシステムで検出可能なものである。当該組成物の好ましい態様は、A型インフルエンザウイルスに特異的な、少なくとも2つの特定の核酸オリゴマーを含むキットである。本明細書で開示する他の態様は、配列番号34~配列番号58からなる配列若しくはそれらに完全に相補的な配列又はそれらのDNA同等物から構成されるB型インフルエンザウイルスに特異的な少なくとも2つの核酸オリゴマーを含む組成物である。好ましい態様としては、配列番号38~配列番号43からなる配列から選択される少なくとも1のオリゴマー、及び、配列番号44~配列番号47からなる配列から選択される少なくとも1のオリゴマーがあげられる。他の好ましい態様としてはまた、配列番号48~配列番号58からなる配列から選択される少なくとも1のオリゴマーがあげられる。いくつかの好ましい態様では、少なくとも1のオリゴマーは少なくとも1の2’-メトキシRNA基を含み、他の好ましい態様では、少なくとも1のオリゴマーは、オリゴマーの5’末端に少なくとも1のロックされた核酸LNA残基を含む。好ましい態様では、配列番号48~配列番号58からなる配列から選択されるオリゴマーは、直接的又は間接的にオリゴマー配列に結合した検出可能な標識を含む。好ましい態様としては、均一系アッセイシステムで検出できる標識があげられる。組成物の好ましい態様は、B型インフルエンザウイルスに特異的な、少なくとも2つの特定の核酸オリゴマーを含むキットである。他の態様は、試料中のA型インフルエンザウイルス又はB型インフルエンザウイルスの核酸を検出する方法であって、実質的に等温条件下で増幅産物を産生するために、試料中に含まれるA型インフルエンザウイルス核酸又はB型インフルエンザウイルス核酸中の標的配列をインビトロで核酸ポリメラーゼを用いて増幅する工程であって、A型インフルエンザウイルスの標的配列は配列番号1若しくはそれに完全に相補的な配列又はそれらのRNA同等物に含まれており、B型インフルエンザウイルスの標的配列は配列番号32若しくはそれに完全に相補的な配列又はそれらのRNA同等物に含まれている前記増幅工程及び増幅産物を検出する工程を含む、前記方法である。好ましい態様では、A型インフルエンザウイルスの標的配列を増幅する工程は、配列番号7~配列番号18からなる配列から選択される少なくとも1のオリゴマー及び配列番号21~配列番号24からなる配列から選択される1のオリゴマーを用いる。他の態様では、B型インフルエンザウイルスの標的配列を増幅する工程は、配列番号38~配列番号43からなる配列から選択される少なくとも1のオリゴマー及び配列番号44~配列番号47からなる配列から選択される1のオリゴマーを用いる。他の好ましい態様では、検出工程は、配列番号25~配列番号31からなる配列から選択される少なくとも1のプローブを用いてA型インフルエンザウイルスの標的配列の増幅産物を検出するか、又は、配列番号48~配列番号58からなる配列から選択される少なくとも1のプローブを用いてB型インフルエンザウイルスの標的配列の増幅産物を検出する。本方法の好ましい態様としてはまた、内部調節オリゴマーをもたらす工程、内部調節オリゴマーに含まれる標的配列を増幅する工程、及び、内部調節オリゴマーから作製された増幅産物を検出する工程により本方法の増幅工程及び検出工程が適切に実行されたことを示す工程があげられる。他の好ましい態様では、本方法はまた、増幅工程の前に、A型インフルエンザウイルス核酸又はB型インフルエンザウイルス核酸を含有する試料由来のインフルエンザウイルス核酸を単離する工程があげられる。例えば、本発明は以下を提供する:項目1配列番号3~配列番号18及び配列番号21~配列番号31、若しくはそれらと完全に相補的な配列、又はそれらのDNA同等物からなる配列から構成されるA型インフルエンザウイルスに特異的な、少なくとも2つの核酸オリゴマーを含む、組成物。項目2核酸オリゴマーが、配列番号7~配列番号18からなる配列から選択される少なくとも1のオリゴマー、及び、配列番号21~配列番号24からなる配列から選択される少なくとも1のオリゴマーを含む、項目1記載の組成物。項目3配列番号25~配列番号31からなる配列から選択される少なくとも1のオリゴマーをさらに含む、項目2記載の組成物。項目4少なくとも1のオリゴマーが、少なくとも1の2’-メトキシRNA基を含む、項目1記載の組成物。項目5少なくとも1のオリゴマーが、オリゴマーの5’末端に少なくとも1のロックされた核酸LNA残基を含む、項目1記載の組成物。項目6配列番号25~配列番号31からなる配列から選択されるオリゴマーが、直接的又は間接的にオリゴマー配列に結合した検出可能な標識を含む、項目3記載の組成物。項目7標識が均一系アッセイシステムで検出可能である、項目6記載の組成物。項目8A型インフルエンザウイルスに特異的な少なくとも2つの核酸オリゴマーがキットの形態である、項目1記載の組成物。項目9配列番号34~配列番号58からなる配列若しくはそれらに完全に相補的な配列又はそれらのDNA同等物から構成されるB型インフルエンザウイルスに特異的な少なくとも2つの核酸オリゴマーを含む、組成物。項目10核酸オリゴマーが、配列番号38~配列番号43からなる配列から選択される少なくとも1のオリゴマー、及び、配列番号44~配列番号47からなる配列から選択される少なくとも1のオリゴマーを含む、項目9記載の組成物。項目11配列番号48~配列番号58からなる配列から選択される少なくとも1のオリゴマーをさらに含む、項目10記載の組成物。項目12少なくとも1のオリゴマーが、少なくとも1の2’-メトキシRNA基を含む、項目9記載の組成物。項目13少なくとも1のオリゴマーが、オリゴマーの5’末端に少なくとも1のロックされた核酸LNA残基を含む、項目9記載の組成物。項目14配列番号48~配列番号58からなる配列から選択されるオリゴマーが、直接的又は間接的にオリゴマー配列に結合した検出可能な標識を含む、項目11記載の組成物。項目15標識が均一系アッセイシステムで検出可能である、項目14記載の組成物。項目16B型インフルエンザウイルスに特異的な少なくとも2つの核酸オリゴマーがキットの形態である、項目9記載の組成物。項目17試料中のA型インフルエンザウイルス又はB型インフルエンザウイルスの核酸を検出する方法であって、以下の:実質的に等温条件下で増幅産物を産生するために、試料中に含まれるA型インフルエンザウイルス核酸又はB型インフルエンザウイルス核酸中の標的配列を、インビトロで核酸ポリメラーゼを用いて増幅する工程であって、前記A型インフルエンザウイルスの標的配列が、配列番号1若しくは配列番号1と完全に相補的であるか、又はそれらのRNA同等物に含まれ、かつ、前記B型インフルエンザウイルスの標的配列が、配列番号32若しくは配列番号32と完全に相補的であるか、又はそれらのRNA同等物に含まれる前記工程;及び、前記増幅産物を検出する工程、を含む、前記方法。項目18A型インフルエンザウイルスの標的配列を増幅する工程で、配列番号7~配列番号18からなる配列から選択される少なくとも1のオリゴマー、及び、配列番号21~配列番号24からなる配列から選択される1のオリゴマーを用いる、項目17記載の方法。項目19B型インフルエンザウイルスの標的配列を増幅する工程で、配列番号38~配列番号43からなる配列から選択される少なくとも1のオリゴマー、及び、配列番号44~配列番号47からなる配列から選択される1のオリゴマーを用いる、項目17記載の方法。項目20検出工程で、A型インフルエンザウイルスの標的配列の増幅産物を検出するために配列番号25~配列番号31からなる配列から選択される少なくとも1のプローブ、又は、B型インフルエンザウイルスの標的配列の増幅産物を検出するために配列番号48~配列番号58からなる配列から選択される少なくとも1のプローブを用いる、項目17記載の方法。項目21内部調節オリゴマーをもたらす工程;内部調節オリゴマーに含まれる標的配列を増幅する工程;及び、内部調節オリゴマーから作製される増幅産物を検出する工程であって、それにより、前記方法の増幅工程及び検出工程が適当に行われたことを示す前記工程をさらに含む、項目17記載の方法。項目22増幅工程の前に、A型インフルエンザウイルス核酸又はB型インフルエンザウイルス核酸を含む試料からインフルエンザウイルス核酸を単離する工程をさらに含む、項目17記載の方法。核酸オリゴマー配列は、インビトロでの核酸増幅の方法を用いて、好ましくはTMA又はNASBA等の転写介在増幅反応を用いて、試料中に存在するA型インフルエンザウイルス及びB型インフルエンザウイルスの核酸を増幅するためのプライマーとして、及び、増幅された核酸配列の検出のためのプローブとして機能しうることが開示される。検出プローブは、増幅プロセスの終了後又はプロセス中に、増幅したウイルス配列の部分に特異的にハイブリダイズする。いくつかの態様では、増幅配列に特異的に結合した標識プローブを混合物中で検出する均一系検出方法を用いて増幅産物を検出する例えば、Arnoldetal1989ClinChem3515881594;米国特許第5,658,737号、Nelsonら、及び米国特許第5,118,801号及び第5,312,728号、Lizardiらを参照。方法の態様はまた、標的インフルエンザウイルス核酸を捕捉して、他の試料成分から分離するために試料を加工するための捕捉プローブとして機能するオリゴヌクレオチド配列を用いる米国特許第6,110,678号、第6,280,952号及び第6,534,273号、Weisburgら。本明細書で開示された方法は、ヒト由来の試料中、好ましくは、鼻咽頭又は咽頭のスワブ、鼻腔及び気管支の洗浄液、鼻腔吸引物又は唾液中、に存在するA型及びB型インフルエンザウイルス核酸を検出する。本明細書で開示された組成物としては、A型インフルエンザウイルス又はB型インフルエンザウイルスの標的核酸を試料中の他の成分から分離するための捕捉オリゴマー、インフルエンザウイルスのゲノム配列に存在する選択された核酸配列を特異的に増幅するための増幅オリゴマー及び増幅配列を検出するための核酸プローブがあげられる。好ましい態様としては、転写関連増幅反応の開始約45分以内に検出可能なシグナル又は反応をもたらすアッセイ中で、A型及びB型インフルエンザウイルスの配列を増幅して検出するためのオリゴマーの特異的な組み合わせがあげられる。開示された核酸配列及び方法は、診断が感染の初期段階例えば、兆候がみられてから48時間以内で行われ、効果的な治療が開始されるように、比較的短時間での試料中に存在するウイルス粒子由来のA型及びB型インフルエンザウイルス核酸の増幅及び検出に有用である。当該方法は、インフルエンザウイルスに感染しているが明確な兆候が現れていない個体のスクリーニング、特に、インフルエンザウイルス感染から致死又は重篤な合併症の危険性が高い患者、例えば、若年者、老人又は免疫不全の個体のスクリーニングに有用である。当該方法はまた、伝染病の流行又は大流行時等の多量の試料の迅速スクリーニングにも有用であり、適当な公衆衛生対策を開始できる。当該方法は、研究員が、ヒトに感染性になったA型又はB型インフルエンザウイルスに関連するトリインフルエンザウイルス等の病原体に暴露される危険性を最小限にするため、有用である。すなわち、本明細書で開示された当該方法及び組成物は、A型又はB型インフルエンザウイルスを含有しうる臨床試料の迅速、高感度及び特異的な試験の要望に応えるものである。生物学的又は臨床的試料を含む試料又は標本は、例えば、鼻咽頭又は咽頭のスワブ、鼻腔及び気管支の洗浄液、鼻腔吸引物又は唾液、他の呼吸組織若しくは浸出液、又は、リンパ節を含む生検試料を含む、インフルエンザウイルス標的核酸を含む、生体若しくは死体又は動物由来の組織又は材料をいう。試料は、細胞内核酸を、酵素、緩衝液、塩、界面活性剤等を含みうる溶液中に放出するために、物理的又は機械的に組織や細胞の構造を崩壊して処理してアッセイ試料を調製してもよい。核酸は、RNA、DNA、混合RNA-DNA及びその類似物のポリマーを含み、共に結合してポリヌクレオチドを形成する窒素含有複素環塩基若しくは塩基類似物を有する、ヌクレオシド又はヌクレオシド類似物を含む多重化合物をいう。核酸の骨格は、1又はそれ以上の糖ホスホジエステル結合、ペプチド-核酸結合ペプチド核酸又はPNA;国際特許出願公報WO95/32305号、ホスホロチオネート結合、メチルホスホネート結合又はそれらの組み合わせを含む、様々な結合から構成されてもよい。核酸の糖部分は、リボース、デオキリボース、又は、例えば、2’-メトキシ又は2’-ハロゲン置換体などの置換がなされた類似の化合物でもよい。窒素含有塩基は、慣用の塩基A、G、C、T、U、その類似物例えば、イノシンその他;TheBiochemistryoftheNucleicAcids536Adamsetaled11thed1992参照、プリン又はピリミジンの誘導体例えば、N4-メチルデオキシグアノジン、デアザ-又はアザ-プリン、デアザ-又はアザ-ピリミジン、5又は6位に置換基があるピリミジン塩基、2、6又は8位に置換基があるプリン塩基、2-アミノ-6-メチルアミノプリン、O6-メチルグアニン、4-チオ-ピリミジン、4-アミノ-ピリミジン、4-ジメチルヒドラジン-ピリミジン及びO4-アルキル-ピリミジン;米国特許第5,378,825号及び国際特許出願WO93/13121号でもよい。核酸は、1又はそれ以上の、骨格のポリマーの位置に窒素含有塩基がない脱塩基残基を含んでもよい米国特許第5,585,481号。核酸は慣用のRNA又はDNAの糖、塩基及び結合のみを含んでもよく、又は、慣用の成分及び置換物を共に含有してもよい例えば、2’-メトキシ結合、又は、慣用の塩基及び1又はそれ以上の塩基類似物を共に含有するポリマーがある慣用の塩基。核酸には、ロックされた核酸LNA、相補的なRNA及びDNA配列へのハイブリダイゼーション親和性を高めるRNA擬似糖構造中の二環式フラノース単位がロックされた、1又はそれ以上のLNAヌクレオチドモノマーを含有する類似物が含まれる。VesterandWengel2004Biochemistry43421323341。ハイブリダイゼーション複合体の安定性に影響を及ぼしうるオリゴマーの態様としては、PNAオリゴマー、2’-メトキシ若しくは2’-フルオロ置換RNAを含むオリゴマー、又は、荷電結合例えば、ホスホロチオエート又は中性基例えば、メチルホスホネートを含有するオリゴマーを含む、ハイブリダイゼーション複合体の全体的な電荷、電荷密度、又は立体的関係に影響を及ぼすオリゴマーがあげられる。オリゴマー又はオリゴヌクレオチドは、一般的には、下限が約2~5ntで上限が約500~900ntの範囲の大きさであるものを含む、1,000ヌクレオチドnt未満の核酸をいう。ある好ましい態様としては、下限が約5~15ntで上限が約50~600ntの範囲の大きさであるオリゴマー、そして他の好ましい態様としては、下限が約10~20ntで上限が約22~100ntの範囲の大きさであるオリゴマーである。オリゴマーは天然源から精製されてもよいが、好ましくは、周知の酵素的又は化学的方法を用いて合成される。オリゴマーは、機能的名称で表してもよく例えば、捕捉プローブ、プライマー又はプロモータープライマー、当業者であれば、そのような用語がオリゴマーを表すことを理解するであろう。捕捉プローブ、捕捉オリゴヌクレオチド又は捕捉オリゴマーは、標準的塩基対で標的核酸中の標的配列に特異的にハイブリダイズし、標的核酸を捕捉するために支持体に固定されたプローブ上の結合パートナーと結合する核酸オリゴマーをいう。捕捉オリゴマーの好ましい態様には、通常、同一オリゴマー上に、配列-結合領域すなわち、標的特異的部分及び固定化プローブ結合領域の2つの結合領域が含まれるが、この2つの領域は、1又はそれ以上のリンカーが共に結合した2つの異なるオリゴマー上に存在してもよい。固定化プローブ、固定化オリゴマー又は固定化核酸は、捕捉オリゴマーを支持体に直接的又は間接的に結合させる核酸結合パートナーをいう。支持体に結合した固定化プローブは、試料中の非結合材料から標的が結合した捕捉プローブを分離するのを促進する。いかなる支持体が用いられてもよく、例えば、ナイロン、ニトロセルロース、ガラス、ポリアクリレート、混合ポリマー、ポリスチレン、シランポリプロピレン又は金属等の様々な材料から構成されうる、溶液が含まれていない基質又は粒子等を用いてもよい。好ましい態様では、例えば、固定化プローブが、直接的例えば、共有結合、キレート又はイオン相互作用を介して又は間接的例えば、リンカーを介してに結合した単分散常磁性粒子均一サイズ±5等の磁気的誘導粒子であり、結合は核酸ハイブリダイゼーション条件では安定であるような支持体を用いる。分離又は精製は、試料中の1又はそれ以上の成分を1又はそれ以上の他の試料成分から取ることをいい、例えば、タンパク質、炭水化物、脂質又は他の核酸もまた含有しうる一般的な水溶液から、ある核酸を取ることをいう。好ましい態様では、分離工程又は精製工程は、標的核酸を他の試料成分から、少なくとも約70、より好ましくは少なくとも約90及びさらにより好ましくは少なくとも約95取る。増幅オリゴヌクレオチド又は増幅オリゴマーは、例えば、プライマー又は及びプロモータープライマーとして機能するような、標的核酸又はその相補体とハイブリダイズして核酸増幅反応に関与するオリゴヌクレオチドをいう。好ましい増幅オリゴマーは、標的核酸配列又はそれらの相補鎖の領域に相補的な、少なくとも約10の連続した塩基、より好ましくは、少なくとも12の連続した塩基を含有する。連続した塩基は、増幅オリゴマーが結合する標的配列に、好ましくは少なくとも約80、より好ましくは少なくとも約90、及びさらに好ましくは完全に相補的である。好ましい増幅オリゴマーは、約10~約60塩基長で、場合によっては、改変ヌクレオチドが含まれていてもよい。プライマーは、鋳型核酸にハイブリダイズして、3’末端が重合により延長されたオリゴマーをいう。プライマーは、場合によっては、例えば、標的配列に非相補的な5’領域を含むことにより改変されていてもよい。5’プロモーター配列で改変されたプライマーはプロモータープライマーといわれる。分子生物学又は生化学の当業者であれば、プライマーとして機能しうるオリゴマーは5’プロモーター配列を含むように改変されうること、さらにプロモータープライマーとして機能すること、同様に、いかなるプロモータープライマーも5’プロモーター配列があってもなくてもプライマーとして機能しうることを理解するであろう。核酸増幅は、標的核酸配列若しくはその相補的な配列又はそのフラグメントすなわち、完全標的核酸よりも短い配列を含む増幅配列の多数コピーを産生するいかなる周知のインビトロ手順をもいう。周知の核酸増幅手順の例としては、転写介在増幅TMA、核酸配列-ベースの増幅NASBAその他例えば、米国特許第5,399,491号、第5,554,516号、第5,437,990号、第5,130,238号、第4,868,105号及び第5,124,246号等の転写関連方法、複製介在増幅例えば、米国特許第4,786,600号、ポリメラーゼ連鎖反応PCR例えば、米国特許第4,683,195号、第4,683,202号及び第4,800,159号、リガーゼ連鎖反応LCR例えば、欧州特許出願第0320308号及び鎖置換増幅SDA例えば、米国特許第5,422,252号があげられる。複製介在増幅は、自己複製RNA分子及びQB-レプリカーゼ等のレプリカーゼを用いる。PCR増幅は、DNAポリメラーゼ、プライマー及び熱サイクル工程を用いて、DNA又はcDNAの2つの相補鎖の多数コピーを合成する。LCR増幅は、少なくとも4の別個のオリゴヌクレオチドを用いて、ハイブリダイゼーション、ライゲーション及び変性の多数サイクルを用いて、標的及びその相補鎖を増幅する。SDAは、標的配列を含む半改変DNA二重鎖の一方の鎖に切れ目を入れることになる制限エンドヌクレアーゼの認識部位を含有するプライマーを用いて、プライマー延長及び鎖置換工程を繰り返して増幅を行う。好ましい態様は、TMA又はNASBA等の転写関連増幅を用いるが、当業者であれば、本明細書で開示されたオリゴマーが他の増幅方法でプライマーとして容易に用いられることは自明であろう。簡潔には、転写関連増幅は、DNAポリメラーゼ、RNAポリメラーゼ、デオキシリボヌクレオシド3リン酸、リボヌクレオシド3リン酸、オリゴヌクレオチド含有プロモーターを用いて、場合によっては、他のオリゴヌクレオチドを含んでもよいが、核酸鋳型から最終的に多数のRNA転写物を産生する米国特許第5,399,491号及び第5,554,516号、Kacianら、米国特許第5,437,990号、Burgら、国際出願公報WO88/01302号及びWO88/10315号、Gingerasら、米国特許第5,130,238号、Malekら、米国特許第4,868,105号及び第5,124,246号、Urdeaら、国際出願公報WO94/03472号、McDonoughら、国際出願公報WO95/03430号、Ryderらに詳細が報告されている。TMAを用いる好ましい方法は以前に詳細に報告されている米国特許第5,399,491号及び第5,554,516号。検出プローブは、増幅配列を含む標的配列に、標的核酸の検出のために核酸ハイブリダイゼーションを促進する条件下で、特異的にハイブリダイズする核酸オリゴマーをいう。検出は、直接すなわち、標的に直接ハイブリダイズするプローブ又は間接的すなわち、プローブと結合する介在構造物が標的とハイブリダイズするプローブでもよい。プローブの標的配列は、一般的に、プローブが特異的にハイブリダイズするより大きい配列内の特異的配列をいう。検出プローブとしては、標的特異的配列及び他の配列、又は、標的配列が存在するか否かに依存してプローブの3次元構造をもたらす構造があげられる例えば、米国特許第5,118,801号、第5,312,728号、第6,835,542号及び第6,849,412号。標識は、検出するか、検出可能なシグナルをもたらすプローブに、直接的又は間接的に結合する部分又は化合物をいう。直接結合は、共有結合又は非共有相互作用例えば、水素結合、疎水性又はイオンの相互作用及びキレート又は配位錯体の配置を用い、間接結合は、例えば、抗体や他のオリゴヌクレオチドを介した検出シグナルを増幅する架橋部分又はリンカーを用いてもよい。いかなる検出部分をも用いうるが、例えば、放射性核種、ビオチン又はアビジン等のリガンド、酵素、酵素基質、反応基;検出可能な色素、発光化合物例えば、生物発光、発光又は化学発行化合物及び蛍光化合物をもたらす色素又は粒子例えば、ラテックス又は金属ビーズ等の発色団が用いられてもよい。好ましい態様としては、混合物中の結合標識プローブが非結合プローブと比較して検出可能な変化を呈するような均一系システムで検出可能であり、標識をハイブリダイズしなかった標識プローブからハイブリダイズしたものを物理的に取り出さずに検出させる均一系検出可能標識があげられる。例えば、米国特許第5,283,174号、第5,656,207号及び第5,658,737号。好ましい均一系検出可能標識としては、化学発光化合物があげられ、さらに好ましくは周知のAE又はAE誘導体等のアクリジニウムエステルAE化合物があげられる米国特許第5,656,207号、第5,658,737号及び第5,639,604号。標識を合成し、核酸に標識を付着し、標識からシグナルを検出する方法は周知である例えば、SambrooketalMolecularCloningALaboratoryManual2nded第10章並びに米国特許第5,658,737号、第5,656,207号、第5,547,842号、第5,283,174号及び第4,581,333号及び欧州特許出願第0747706号。AE化合物を核酸に結合する好ましい方法は公知である例えば、米国特許第5,585,481号及び米国特許第5,639,604号第10欄第6行目~第11頁第3行目及び実施例8を参照。好ましいAE標識位置はプローブの中央領域及びA/T塩基対領域付近、プローブの3’又は5’末端、又は、所望の標識配列と比較して検出すべきでないプローブである公知配列があるミスマッチ部位若しくはその付近である。もし、例えば、プローブ及び標的配列のような2つの核酸配列のハイブリダイゼーションが安定であるのであれば、配列が当該配列が完全に相補的でなくても、その配列は十分に相補的である。2つの配列が相補的でない1又はそれ以上の残基脱塩基位置を含むを包含していても、全配列では適当なハイブリダイゼーション条件で安定なハイブリダイゼーション複合体を形成する限り、それは、標準的な塩基対例えば、G:C、A:T又はA:Uを用いて、一連の部分的に相補的なヌクレオチド間を水素結合により他の配列にハイブリダイズする十分に相補的な配列である。十分に相補的な配列は、互いにハイブリダイズする配列中で、好ましくは少なくとも約80、より好ましくは少なくとも約90及び最も好ましくは、完全に相補的である。適当なハイブリダイゼーション条件は当業界で周知であり、配列組成物に基づいて予測でき、又は常套試験を用いて経験的に決定できる例えば、SambrooketalMolecularCloningALaboratoryManual2nded190191737757947951及び11471157章、特に、9509511112111311451147及び11551157章。本質的に~からなるは、本明細書で記載される組成物及び方法の基本的及び新規な特性が物質的に変化しない他の成分、組成物又は方法工程が当該組成物又は方法に含まれうることを意味する。当該特性としては、インフルエンザウイルス核酸を少なくとも50の他の公知の呼吸器系病原体から識別する特異性で試料中に存在するA型インフルエンザウイルス又はB型インフルエンザウイルス核酸配列を検出する機能があげられ、好ましくは、検出された増幅ウイルス配列を作製する増幅反応の開始から約45分以内にインフルエンザウイルスの少なくとも1.7~2.7対数コピーを検出する感受性で検出する。特に定義しない限り、本明細書で用いられる全ての科学的及び技術的用語は、関連する当業者に通常理解される意味と同一である。一般的な定義は、例えば、DictionaryofMicrobiologyandMolecularBiology2ndedSingletonetal1994JohnWileySonsNewYorkNY又はTheHarperCollinsDictionaryofBiologyHaleMarham1991HarperPerennialNewYorkNY等の分子生物学界の技術書籍に見出すことができる。特に言及しない限り、本明細書で用いられるか又は意図する技術は、当業者に周知の標準的な方法手順である。本明細書にあげられる実施例はいくつかの好ましい態様の例示である。核酸の標的捕捉、増幅及び検出で機能する核酸オリゴマーを含む組成物並びに生物学的試料中に存在するヒトA型インフルエンザウイルスFluA及びB型インフルエンザウイルスFluBの核酸を検出する方法が本明細書に開示されている。A型インフルエンザウイルスを検出する試験で用いられる適当な標的配列を選択するために、公知のA型インフルエンザウイルスRNA又は部分的又は相補的な配列公衆に利用可能なデータベース、例えば、GenBankが利用できるを含む基質タンパク質MP1をコードするDNA配列を同一又は類似の配列とマッチすることによりアラインさせて比較した。B型インフルエンザウイルスを検出するための試験で用いられる適当な標的配列を選択するために、公知のB型インフルエンザウイルスRNA又は部分的又は相補的な配列公衆に利用可能なデータベース、例えば、GenBankが利用できるを含む基質タンパク質NS1をコードするDNA配列を同一又は類似の配列とマッチすることによりアラインさせて比較した。配列比較は、コンピューター実行アルゴリズムを用いて促進させることもできるが、当業者であれば、手動及び視覚的に比較を行うことができる。比較した個々のウイルス配列間の変化が比較的少ない各ウイルス標的の配列の部分が、本明細書に記載された方法を用いるための合成オリゴマーを設計するための基礎として選択された。FluA標的の検出のためのオリゴヌクレオチド配列を表1に示し、FluB標的の検出のためのオリゴヌクレオチド配列を表2に示す。両方の表では、好ましい機能が、各配列のため、及び好ましい機能としてプロモータープライマーとして同定された配列のために含まれ、当該配列としては、T7RNAポリメラーゼが適当な条件下で初期転写できる5’T7バクテリロファージプロモーター配列配列番号19又は配列番号20からなる下線部があげられる。当業者であれば、他の5’プロモーター配列を下線のT7プロモーター配列と置換しても、その後、適当なRNAポリメラーゼで選択した他のプロモーター配列に機能し、同等のプロモータープライマーオリゴヌクレオチドを作製するであろうことを理解できる。プロモータープライマーを用いない増幅システムでプライマーとして機能することができる、プロモータープライマーとして同一の標的特異的配列があるがプロモーター配列はないオリゴマーもまた示される配列番号13~18及び41~43。当業者であれば、標的捕捉における好ましい機能を有するものとして同定されるオリゴマーには標的特異的部分配列番号3,4、36及び37で示されるがあり、場合によっては、欠失したり、他の配列や結合部分で置換されたりする尾部分配列番号5,6,34及び35で示されるT3A30が含まれることを認識するであろう。配列は、表1及び2にDNA、RNA又はDNA/RNA配列として示されるが、当該配列には、対応するDNA又はRNA配列及びそれらに完全に相補的なDNA又はRNA配列が含まれることを意味する。オリゴマーの好ましい態様としては、骨格構造に影響を及ぼす1又はそれ以上の改変残基例えば、2’-メトキシ置換RNA基、又は、1又はそれ以上のLNAモノマー、好ましくは、プライマーオリゴマーの5’残基を含んでもよく、又は、標識をオリゴマーに結合させる非ヌクレオチドリンカーを含んでもよい。例えば、RNA標的のプローブとして機能するオリゴマーは、2’-メトキシ置換RNA基で合成してもよく、プローブと標的配列の間のハイブリダイゼーションをより安定に促進する。態様には、2’-メトキシ置換RNA基で合成し、配列番号25の第6~7の残基の間、配列番号26及び50の第7~8の残基の間、配列番号26及び27の第8~9の残基の間及び配列番号48及び49の第9~10の残基の間に非ヌクレオチドリンカー米国特許第5,585,481号に記載されたようにを有する、配列番号25~27のオリゴマーが含まれる。他の態様としては、5’の第1~3残基にてLNAで合成された配列番号44及び45のオリゴマー及び5’の第1~4残基にてLNAで合成された配列番号46のオリゴマーがあげられる。標的捕捉オリゴマーの好ましい態様としては、FluA又はFluBの標的核酸に特異的に結合する標的特異的配列及び標的核酸を含有するハイブリダイゼーション複合体を固体支持体上の固定化配列に捕捉することに用いられる、共有結合しているテール配列配列番号5、6、34及び35のT3A30があげられる。捕捉オリゴマーの好ましい態様としては、少なくとも1の2’-メトキシ結合があげられる。捕捉オリゴマーの態様としては、例えば、固定化されたアビジン又はストレプトアビジンに特異的に結合するビオチン化配列のような他の結合部分に結合したFluA又はFluBゲノム配列と結合する標的特異的配列があげられる。テール配列又は結合部分は、ハイブリダイズした標的を捕捉するための固定化プローブ例えば、相補的な配列又はアビジンに結合して、当該混合物から固形支持体を分離することにより、それを他の試料成分から分離する。プロモータープライマー配列を含むプライマー配列は、標的核酸又はそれと相補的な配列と特異的に結合し、かつ、例えば、プロモータープライマー中のプロモーター配列のように標的特異的でない他の配列を含有してもよい。プロモーター配列が結合していてもしていなくてもよい標的特異的配列は、様々なインビトロでの増幅プロセスで増幅オリゴマーとして機能することができる。FluA及びFluBアッセイの態様としては、PCR等の複数の循環する反応温度が必要な増幅方法米国特許第4,683,195号、第4,683,202号及び第4,800,159号を用いてもよく、又は、TMA又はNASBA等の転写関連増幅方法で実質的に等温の反応であってもよい例えば、米国特許第5,399,491号、第5,480,784号、第5,824,518号、第5,888,779号、第5,786,183号、第5,437,990号、第5,130,238号、第4,868,105号及び第5,124,246号並びに国際特許出願WO88/01302号及びWO88/10315号。FluA及びFluBアッセイの好ましい態様としては、プローブが増幅工程中に作製される目的とする標的配列に結合すると、識別可能な蛍光シグナルを発するプローブを含ませることにより、増幅工程すなわち、リアルタイム検出中で検出されるPCRベース又はTMAベースの増幅系を用いてもよい。リアルタイム検出に好ましいプローブとしては、分子ビーコン又は分子スイッチプローブ例えば、米国特許第5,118,801号及び第5,312,728号、Lizardiら、米国特許第5,925,517号及び第6,150,097号、Tyagiら、Giesendorfetal1998ClinChem444826及び分子トーチプローブ例えば、米国特許第6,835,542号及び第6,849,412号、Beckerらといわれるものがあげられる。一般的に、当該プローブとしては、プローブオリゴマーの一端に結合したレポーター色素reporterdye例えば、FAM商標、TET商標、JOE商標、VIC商標、及び、プローブオリゴマーの一端に結合した消光化合物例えば、TAMRA商標又は非蛍光消光剤を含み、シグナル産生物は、その結合している化合物を有する2端が接近しているか離れているかに依存する。試料中のインフルエンザウイルスを検出するアッセイには、目的とする標的領域に特異的な増幅オリゴマー又はプライマーを用いて、試料中に含まれる標的インフルエンザウイルス核酸中の標的領域を増幅する工程、及び、プローブ配列とハイブリダイズすることにより増幅された核酸を検出する工程が含まれる。好ましいアッセイは、転写関連増幅反応を用いて、検出は増幅反応中に行うものである。検出では、増幅核酸を標識し、未標識のプローブと結合させてもよいが、好ましい態様では、標識されたプローブを増幅核酸に結合させる。リアルタイム検出の好ましい態様では、均一系システムで検出される標識プローブを用いる。一般的には、標的インフルエンザウイルス核酸は、増幅工程の前に、他の試料成分から分離される。これは、標的インフルエンザウイルス核酸に特異的に結合する標的特異的捕捉オリゴマーを用いるか、試料から核酸を精製する非特異的な方法を用いて、インフルエンザウイルス核酸を捕捉することで行われる例えば、米国特許第5,234,809号、第5,705,628号、第6,534,262号及び第6,939,672号。好ましい使用の態様では、捕捉工程で標的特異的捕捉オリゴマーを用いる米国特許第6,110,678号、第6,280,952号及び第6,534,273号。捕捉プローブの態様としては、A型インフルエンザウイルスに特異的な核酸配列番号3~6及びB型インフルエンザウイルスに特異的な核酸配列番号34~37があげられる。配列番号5、6、34及び35の態様は、相補的な固定化配列へのハイブリダイゼーションのためのdT3A30テール部分が含まれるが、配列番号3、4、36及び37の態様は、結合対のメンバーである他のリガンド例えば、固定化アビジン又はストレプトアビジンに結合するビオチン化DNAに連結して用いられる。捕捉プローブ、その標的インフルエンザウイルス核酸及び固定化結合パートナー又はプローブの複合体は他の試料成分からインフルエンザウイルス核酸分離することを促進し、場合によっては、捕捉したウイルス核酸をさらに精製するために洗浄工程を用いてもよい。2つのプライマーを用いてインフルエンザウイルス標的領域を増幅することは、様々な公知の核酸増幅反応を用いて実行することができるが、好ましくは、TMA等の転写関連増幅反応米国特許第5,399,491号及び第5,554,516号に詳細に記載されているを用いる。TMAベースのアッセイでは、標的核酸の単一コピーから多くのRNA転写物アンプリコンが産生され、このアンプリコンは、試料中の標的インフルエンザウイルスの存在を示すように検出される。簡潔には、TMAベースアッセイでは、プロモータープライマーは、標的配列に特異的にハイブリダイズし、RNaseH活性を含む逆転写酵素RTは、プロモータープライマーの3’末端からの伸長により第1鎖cDNAを作製して、鋳型鎖を消化する。cDNAはその後、第2プライマーにより結合して、DNAの新しい鎖が、RTを用いて第2プライマーの末端から合成されて、機能的プロモーター配列を含有する二本鎖DNAdsDNAを作製する。そのプロモーターに特異的なRNAポリメラーゼは、プロモーター配列に結合し、初期鋳型に用いられたのと同様の工程を用いて、各々が他の配列の増幅の鋳型として作用することができる複数のRNA転写物が産生される。すなわち、多量の1本鎖増幅産物が実質的に等温である反応条件を用いて産生される。A型インフルエンザウイルスのアッセイの他の態様は、PCR増幅米国特許第4,683,195号、第4,683,202号及び第4,800,159号、Mullisらを用いて、分離した鎖の部分に特異的なプライマー及びdsDNAを分離するサーモサイクル反応を用いて複数DNA鎖を産生して、DNAポリメラーゼを用いて他のdsDNA分子を作製する。例えば、RNA鋳型からcDNAを産生するRTを用いる逆転写PCR等の慣用されている様々な基本的なPCR法もまた用いることができ、その場合、DNAはPCRサイクルで増幅されるか、又は、リアルタイム検出と併用したPCRによって増幅されるが、これらは共に、時として、RT-PCRという例えば、TaqManOneStepRTPCRkitsAppliedBiosystemsIncFosterCityCA。A型インフルエンザウイルス核酸に特異的な増幅オリゴマーの態様としては、配列番号7~12のプロモータープライマー、プロモータープライマー中に含まれる配列番号13~18の標的特異的配列及び配列番号19~24があげられる。好ましい組成物は、配列番号21の第1~3位にLNA残基がある、配列番号7及び配列番号21のオリゴマーの混合物を含み、組成物は配列番号1のA型インフルエンザウイルス標的領域のTMAベースの増幅に有用である。B型インフルエンザウイルス核酸に特異的な増幅オリゴマーの態様としては、配列番号38~40のプロモータープライマー、プロモータープライマー中に含まれる配列番号41~43標的特異的配列及び配列番号44~47があげられる。好ましい組成物としては、配列番号44の第1~3位にLNA残基がある、配列番号39及び配列番号44のオリゴマーの混合物を含み、組成物は配列番号32のB型インフルエンザウイルス標的領域のTMAベースの増幅に有用である。インフルエンザウイルス核酸を検出する方法には、増幅したインフルエンザウイルス産生物RNA又はDNAアンプリコンに特異的に結合する少なくとも1のプローブを用いる検出工程が含まれる。好ましくは、当該プローブは標識されて、均一系システム、すなわち、結合していないプローブから結合したプローブを分離しないシステム中で検出されるシグナルを産生する。好ましいプローブは、均一系システムで化学発光シグナルが産生されて、検出されるアクリジニウムエステルAE化合物で標識される米国特許第5,283,174号、第5,656,744号及び第5,658,737号に実質的に詳細が記載されている。他の好ましいプローブは、例えば、分子スイッチ、ビーコン又はトーチプローブの標識とプローブが結合する場合のみ検出シグナルが発生する蛍光化合物で標識される。A型インフルエンザウイルス配列を特異的に検出する好ましいプローブとしては、好ましくは、配列番号25の第6~7残基間、配列番号26の第7~8残基間又は第8~9残基間及び配列番号27の第8~9残基間にAEが標識されている配列番号25~27のオリゴマーがあげられる。他のA型インフルエンザウイルス配列の特異的検出に好ましいプローブとしては、配列番号28~31の蛍光化合物が標識されたオリゴマーがあげられる。B型インフルエンザウイルス配列の特異的検出に好ましいプローブとしては、、好ましくは、配列番号48及び49の第9~10残基間及び配列番号50の第7~8残基間にAEが標識されている配列番号48~50のオリゴマーがあげられる。他のB型インフルエンザウイルス配列の特異的検出に好ましいプローブとしては、配列番号51~58の蛍光化合物が標識されたオリゴマーがあげられる。A型又はB型インフルエンザウイルス核酸の検出のためのアッセイの好ましい態様には、インフルエンザウイルス核酸増幅及び検出に用いられる同一反応混合物中の内部調節IC特異的プライマー及びプローブを用いて増幅されて検出される、IC核酸が含まれる。IC特異的配列の増幅及び検出は、インフルエンザウイルス特異的シグナルが試験試料中に検出されない場合すなわち、陰性試料でも、アッセイの試薬及び条件が適切に用いられたことを示す。ICは、アッセイの定量的結果をもたらす内部校正として用いられてもよい。好ましいICの態様は、インフルエンザウイルスではない天然源例えば、HIV由来のランダム配列である。好ましいICは、配列番号65又はそのRNA転写物であり、このICの増幅のためのプライマーの好ましい態様としては、配列番号61、62、64、66及び67のプライマーがあげられる。ICアンプリコンの検出のためのプローブには、本明細書に記載されたアッセイ条件下で、配列番号65又はその相補体DNA又はRNAに含まれる連続した配列に特異的にハイブリダイズする、少なくとも10残基のいかなるオリゴマーも含まれる。好ましいIC特異的プローブは、一端を蛍光化合物で、他の端を消光剤で標識した配列番号63のオリゴマーが例示される。アッセイ中にICを含む好ましい態様では、ICは、アッセイ中、目的とする分析物と同じように処理される。例えば、標的捕捉工程が試料中のインフルエンザウイルス核酸標的の精製にも用いられる場合、標的捕捉工程には、標的インフルエンザウイルス核酸及び他の試料成分に含まれる混合物からICを精製するためのICに特異的な捕捉オリゴマーが含まれる。配列番号65のICに特異的な捕捉オリゴマーの好ましい態様としては、配列番号59及び60のオリゴマーがあげられる。一般に、本明細書に記載された組成物を用いて、A型又はB型インフルエンザウイルス核酸の増幅及び検出を示すのに用いられた方法は、以下の工程を含んだ。インフルエンザウイルスRNAは、標的インフルエンザウイルス核酸を、他の試料成分から分離させる固形支持体に結合させる方法を用いて他の試料成分から分離される。好ましい態様では、ウイルスRNAはインフルエンザウイルス分析物の標的特異的捕捉プローブを含む標的捕捉システムを用いるか例えば、米国特許第6,110,678号、第6,280,952号及び第6,534,273号に記載された方法の工程を用いる、又は、核酸の分離のための非特異的な方法米国特許第5,234,809号を用いて、他の試料成分から分離された。他の試料成分からウイルスRNAを非特異的に分離するには、核酸を固形支持体に可逆的に付着させて、その後、付着した核酸を実質的な水溶液で洗浄して抽出して例えば、QIAAMP商標viralRNAMinikitQiagenIncを用いる行った。単離したインフルエンザウイルス核酸は、TMA又はPCR増幅を用いてゲノムを包含する特異的な標的配列を増幅し、増幅産物は増幅反応の完了後又は増幅中に検出されたすなわち、リアルタイム検出。リアルタイム検出では、蛍光粒子標識プローブ例えば、分子ビーコンは、プローブがその標的配列にハイブリダイズする場合のみ、検出シグナルが発生するように用いられ、蛍光は標準的なフローサイトメトリーを用いて検出された。一般的に、アッセイは、異なる5’蛍光粒子で2つの異なるプローブであるインフルエンザウイルス特異的プローブ及びIC特異的プローブを検出した。蛍光は、反応物をインキュベートして、反応中の時間間隔で異なる波長で蛍光を検出するシステム例えば、DNAEngineOPTICON商標2systemorCHROMO4商標RealTimePCRDetectorBioRadLaboratoriesIncHerculesCAを用いて検出した。各チャネル中のリアルタイム検出蛍光シグナルは、標準的な方法を用いて分析した。例えば、検出されたシグナルは、反応ごとのデータ点相対蛍光度対時間に対して最適なカーブを作成するために正規化され、結果は、シグナルが予め規定しておいたレベルに適合するか上回る場合、発生時間として報告された。TMAベースアッセイを比較するために、リアルタイム逆転写PCRベースアッセイRT-PCRを、標準的なPCR反応成分TAQMAN登録商標が提供するOneStepRT-PCRMasterMixReagentsKitAppliedBiosystemsIncを含む50μl反応物中の0.9pmol/μlのプライマーA型インフルエンザウイルスに配列番号68及び配列番号69又はB型インフルエンザウイルスに配列番号71及び配列番号72及び0.2pmol/μlのプローブA型インフルエンザウイルスに配列番号70及びB型インフルエンザウイルスに配列番号73を用いて行った。インキュベーションは、48°C30分、95°C10分、95°C15秒の45サイクルの後、冷却し、最後に60°C1分という条件を用いて行った。標的増幅産物とハイブリダイズする分子ビーコンプローブの増幅及び検出は、45サイクル各々で得られた蛍光シグナルを読み込む、リアルタイム蛍光検出のための開口システムCHROMO4商標BioRadLaboratoriesIncを用いて行った。リアルタイム蛍光シグナルは解析され、分析物の検出は、標準的な方法を用いて蛍光発生カーブから算出した。リアルタイムTMAベースアッセイは、主として分析物核酸、増幅試薬APTIMA商標reagentGenProbeIncorporatedSanDiegoCA、T7プロモータープライマー9pmol/反応含有、プロモーターがない第2プライマー15pmol/反応及びアンプリコン検出のための分子ビーコンプローブ0.2-0.3pmol/反応を40μl反応液標準的な96穴プレート1ウェル中に不活性化オイルで覆うか、蒸発を防ぐために装置で密封するに含む反応混合物中で行った。標的核酸、プライマー及びプローブの混合物は、60°C10分間インキュベートし、42°Cで5分間冷却してRT及びT7RNAポリメラーゼ含有酵素試薬を添加した後、混合物を混合して例えば、30秒間ボルテックス、蛍光の検出を3秒ごとに実行する間、等温増幅のために42°Cで75~100分間インキュベートした。増幅及び検出工程は、リアルタイム2色蛍光検出のために、インキュベーションと開口チャネル蛍光光度計GHROMO4商標BioRadLaboratoriesIncを用いて行った。一般的に、上記のように、標的インフルエンザウイルス核酸のためのプライマー及びプローブ並びにIC特異的プライマー及びプローブを含む反応混合物を含む、ICを含むアッセイでは、各プローブを、別個に検出可能な5’蛍光粒子で標識した。リアルタイム蛍光シグナルを解析して、検出シグナル発生時期を算出した。発生時期は、例えば、検出されたシグナル相対蛍光単位又はRFUを分析する方法を用いて算出したが、このシグナルはシグナル検出時間RFUtデータ点に関連し、RFUtデータ点が所定の閾値に到達した時間である発生時期T-timeを測定した2005年3月10日に出願された米国出願第60/659,874号、Scaleseら、に詳細に記載。簡潔には、RFUtデータは、バックグラウンドシグナルnoiseレベルを差し引いて処理され、カーブRFU対時間は所定の最小点及び最大点の間のデータにカーブを最適化するために正規化される。一般的に、高濃度の分析物を含む試料は、カーブが高勾配となり、発生時期が早まる。本明細書に記載される実施例では、試料は時として、既知量の標的インフルエンザウイルス核酸A型又はB型インフルエンザウイルスRNAで反応ごとの対数コピーとして表されるを含有し、平均mean発生時期平均T時間は同一に行った複製試験として測定される。平均発生時期は、例えば、分析物の単一の既知量を比較するような、異なるアッセイ条件の相対効果を測定するために比較し、PCRベースアッセイを用いて検出した発生時期を、TMAベースアッセイを用いて比較した。ICを含むTMAベースアッセイでは、ICは、標的インフルエンザウイルス核酸の増幅と同一反応でIC特異的プライマーを用いて増幅した配列番号65からインビトロで作製した既知量のRNA転写物である。一般的に、A型インフルエンザウイルスのアッセイでは、IC特異的プライマーは配列番号610.5pmol/反応及び配列番号6215pmol/反応であり、B型インフルエンザウイルスのアッセイでは、IC特異的プライマーは配列番号640.5pmol/反応及び配列番号6215pmol/反応であり、上記アッセイでは共に、配列番号630.75pmol/反応のIC特異的検出プローブを用いた。リアルタイム検出を伴うTMAベースのFluA及びFluBアッセイは、他の呼吸器系ウイルス、通常、口腔又感染に関連する微生物細菌及び真菌及びいくつかのヒトインフルエンザウイルス亜型に対して試験する場合、各インフルエンザウイルス標的に100特異的となった。4年間にわたってインフルエンザの時期に採取した臨床試料について行った試験では、本明細書で記載したTMAベース及びPCRベースアッセイを比較した場合、感受性及び特異性が100一致したことが示された。リアルタイム検出を伴うTMAベースアッセイは、ウイルス核酸の検出のためのリアルタイムPCRベースアッセイに要する時間よりも短い時間で得られた試料中のインフルエンザウイルスの存在を示す、好都合な陽性検出結果であった。例えば、リアルタイム検出を伴うPCRベースアッセイが典型的には陽性結果を得るのに2時間又はそれ以上を要するのに、リアルタイム検出を伴うTMAベースアッセイは、一般的には、増幅反応開始から45分未満で陽性の結果を得られた。他に特に特定しない限り、通常、本明細書中に記載したTMAベースアッセイで用いられる試薬としては、以下のものがあげられる。試料輸送試薬:110mMラウリル硫酸リチウムLLS、15mMNaH2PO4、15mMNa2HPO4、1mMEDTA、1mMEGTA、pH6.7。溶解バッファー:790mMHEPES、230mMコハク酸、10w/vLLS及び680mMLiOH一水和物。標的捕捉試薬TCR:250mMHEPES、1.88MLiCI、310mMLiOH、100mMEDTA、pH6.4及びそれらに共有結合するdT14オリゴマーがある250μg/mlの常磁性体粒子0.7~1.05μ粒子、Sera-Mag商標MG-CM。洗浄溶液:10mMHEPES、150mMNaCI、6.5mMNaOH、1mMEDTA、0.3v/vエタノール、0.02w/vメチルパラベン、0.01w/vプロピルパラベン及び0.1w/vラウリル硫酸ナトリウム、pH7.5。増幅試薬:プライマー及びプローブを添加してもよい、125mMHEPES、26.7mMrATP、33.3mMrGTP、rCTP及びUTPを各5mM、dATP、dCTP、dGTP及びdTTPを各1.33mM、8w/vトレハロース、pH7.7の濃縮溶液。TMA酵素:反応毎約90UμlのMMLV逆転写酵素RT及び反応毎約20UμlのT7RNAポリメラーゼ1UのRTは1nmolのdTTPを10分間37°Cで、200-400μUのオリゴ-dT-感作ポリA鋳型を用いて取り込み、1UのT7RNAポリメラーゼは、RNAに1nmolのATPに1時間37°CでDNA鋳型中でT7プロモーターを用いて取り込む。AE標識プローブのプローブ試薬:a100mMLi-スクシネート、3w/vLLS、10mMメルカプトエタンスルホン酸MES及び3w/vポリビニルピロリドン、又はb100mMLi-スクシネート、0.1w/vLLS及び10mMMESの溶液。ハイブリダイゼーション試薬:C-型100mMコハク酸、2w/vLLS、100mMLiOH、15mMアルドリチオールaldrithiol-2、1.2MLiCI、20mMEDTA及び3.0v/vエタノール、pH4.7。選択試薬:非結合オリゴマーのAE標識を加水分解するために、600mMホウ酸、182.5mMNaOH、1v/vオクトキシノールoctoxynolTRITON登録商標X-100、pH8.5~9.2。AE標識の検出試薬は検出試薬I:1mM硝酸及び32mMH2O2、並びに検出試薬II:1.5MNaOH米国特許第5,283,174号、第5,656,744号及び第5,658,737号参照。インフルエンザウイルスの増幅及び検出のためのTMAベースアッセイ本実施例は、共に、同一アッセイ条件中で増幅及び検出される内部コントロールICを用いるA型インフルエンザウイルス検出のためのTMAベースアッセイFluAアッセイ及びB型インフルエンザウイルス検出のためのTMAベースアッセイFluBアッセイを示す。TMAベースFluAアッセイは、A型インフルエンザウイルス標的の量を変動させて用いて配列番号1のRNA転写物を反応毎0~6.7対数コピー、実質的に上記のように実行したTMA反応において、配列番号89pmol/反応及び配列番号2115pmol/反応のプライマー並びに配列番号29の蛍光粒子標識プローブ0.32pmol/反応を用いた。反応は、IC成分がある場合とない場合配列番号61及び62のプライマー、配列番号63のプローブ及び配列番号65のIC標的RNA転写物を反応毎0又は2.3対数コピーで行った。各反応の6回複製を行い、標準の96穴プレートの1ウェル各反応は、適当な標的オリゴヌクレオチドを含有する増幅試薬の30μlを用いて、60°C10分間及び42°C5分間でインキュベートした後、TMA酵素を酵素試薬中の各反応物に添加して反応毎10μl反応物を混合して30秒間ボルテックス、45~60分間42°Cで、上記のように、時間間隔で蛍光プローブシグナルが検出される間CHROMO4登録商標器具内で、増幅インキュベーションした。試験の結果を、A型インフルエンザウイルス分析物のシグナルの平均発生時期として算出した標準偏差SDで表3に示す。陰性コントロール試料A型インフルエンザウイルス標的を含まないは、陽性試料の発生時期の算出のために、バックグラウンドノイズシグナルをもたらした。結果は、A型インフルエンザウイルス標的の検出のためのアッセイのダイナミックレンジは、ウイルス標的の1.7~6.7対数コピーであり、ICはウイルス標的希釈範囲6.7対数コピーまでを超えて検出されたことを示す。個々のTMAベースアッセイは、配列番号21の第2プライマー15pmol/反応で、異なるプロモータープライマー配列番号8、9、10及び12、各々別個に9pmol/反応で試験したを用いて増幅した2.7又は3.7対数コピーのA型インフルエンザウイルス標的配列番号1の転写物を用いた以外は、上記と実質的に同様の手順を用いて行い、アンプリコンを配列番号29の蛍光粒子標識プローブ8pmol/反応を用いて検出した。陽性シグナルの同様な結果が、異なるプライマーの組み合わせを用いたこれらの試験で得られたが、ある組み合わせでは、シグナルの発生時間が短くなったことが測定されて、増幅でさらに有用であった。配列番号8及び21のプライマーでは発生時間は20.9~25.8分であり、配列番号9及び21のプライマーでは発生時間は30.4~34.8分であり、配列番号10及び21のプライマーでは発生時間は19.4~27.9分であり、配列番号12及び21のプライマーでは発生時間は19.8~25.8分であった。TMAベースのFluBアッセイは、B型インフルエンザウイルス特異的プライマー及びプローブ以外は同様の条件を用いて行った。1の態様では、配列番号399pmol/反応及び配列番号4415pmol/反応のプライマーは、B型インフルエンザウイルス標的量を変動させて配列番号32のRNA転写物を反応毎0~7.7対数コピー増幅するために用いて、アンプリコンを配列番号528pmol/反応の蛍光粒子標識プローブを用いて検出した。反応は、実質的に上記のように行い、IC成分がある場合とない場合配列番号64及び62のプライマー、配列番号63のプローブ及び反応毎0又は2.3対数コピーである配列番号65のRNA転写物であるIC標的で行った。これらFluBアッセイの結果を、B型インフルエンザウイルス分析物に関するシグナルの発生の平均時間を表した表4算出された標準偏差SDに示す。陰性コントロール試料インフルエンザウイルス標的なしの結果は、陽性試料の発生時間を算出するのにバックグラウンドノイズシグナルとして機能する。これらの結果は、FluBアッセイのダイナミックレンジがB型インフルエンザウイルス標的の1.7~7.7対数コピーであり、ICがB型インフルエンザウイルス標的の反応毎に5.7対数コピーまで検出されたことを示す。個々のTMAベースのFluBアッセイを、上記のような条件を用いて行ったが、同様の結果をもたらした配列番号52、55及び58の異なる蛍光粒子標識プローブを用いて検出した。これらのTMAベースのFluBアッセイでは、反応毎にB型インフルエンザウイルスRNA標的を8対数コピーで増幅するためのプライマーは配列番号393pmol/反応及び配列番号4415pmol/反応であった。検出プローブは各々約0.3pmol/反応を上記のように、7複製増幅及び検出アッセイで別個に試験した。これらのアッセイでは、平均発生時間は:配列番号52プローブで14.0±0.16分、配列番号55プローブで10.7±0.22分及び配列番号58プローブで12.0±0.33分であった。配列番号51、52、53、56及び57の蛍光粒子標識プローブを用いること及びB型インフルエンザウイルス標的RNA反応毎4.3対数コピー量を少量にした以外は同様の条件を用いて行った別の実験では、平均発生時間は:配列番号56プローブで24.9±0.12分、配列番号57プローブで25.8±0.05分、配列番号52プローブで26.5±0.30分、配列番号53プローブで26.6±0.59分及び配列番号51プローブで31.8±0.48分であった。同様の試験では、TMAベースのFluA及びFluBアッセイを、異なるICプライマーの組み合わせを用いて行った。FluAアッセイでは、配列番号9及び21のA型インフルエンザウイルス特異的プライマーは、A型インフルエンザウイルスRNA反応毎3.7対数コピーの配列番号1の転写物を増幅し、アンプリコンは配列番号29の蛍光粒子標識A型インフルエンザウイルス特異的プローブを用いて検出した。FluBアッセイでは、配列番号39及び44のA型インフルエンザウイルス特異的プライマーは、A型インフルエンザウイルスRNA反応毎4.7対数コピーの配列番号32の転写物を増幅し、アンプリコンは配列番号48の蛍光粒子標識A型インフルエンザウイルス特異的プローブを用いて検出した。FluA及びFluBアッセイでは共に、IC特異的オリゴマーの異なる組み合わせをIC反応毎2.3対数コピーの配列番号65のRNA転写物を増幅するために用いた:配列番号62のプライマー10pmol/反応を配列番号61、64、66又は67の約0.5pmol/反応のプライマーと組み合わせて、ICアンプリコンを、配列番号63の蛍光粒子標識プローブを用いて全ての反応で検出した。これらの試験の結果は、IC特異的プライマーの全ての組み合わせが、アッセイのための各インフルエンザウイルス標的の検出を妨げることなくFluA及びFluBアッセイで用いられ、配列番号61のプロモータープライマーがFluAアッセイには最適であり、配列番号64のプロモータープライマーがFluBアッセイには最適であったことが示された。TMAベースのFluA及びFluBアッセイ特異性本実施例は、試料が、正常なヒトの口腔叢又は呼吸器系の感染で通常見られる他の細菌やウイルス病原体を含有する場合、各試験で目的とするウイルス標的を特異的に検出するが、陽性シグナルはもたらさないような、TMAベースのFluA及びFluBアッセイの特異性を示す。TMAベースのFluA及びFluBアッセイは、公知の細菌やウイルスを含むがA型インフルエンザウイルス又はB型インフルエンザウイルス核酸陽性コントロールを除くを含有しない試料を試験したことを除いて、実質的に実施例1に記載されたとおりに行った。すなわち、アッセイは、他の細菌やウイルス核酸と交差反応をしないことを示す陰性の結果をもたらした。ICRNAを、アッセイ条件並びに増幅及び検出工程が、試料中のIC標的又は交差反応標的を検出するために適切に行われたことを示すために全ての試験に含ませた。TMAベースの、ICを含むFluA試験及び同一のICを含むFluB試験を用いて、公知のウイルスを含有する試料を各々別個に試験した。個々のFluA及びFluBアッセイは、A型インフルエンザウイルス又はB型インフルエンザウイルスの標的を含む陽性コントロール試料を用いて同一の条件で同時に行った。陽性コントロールには、4つの採取源からのA型インフルエンザウイルス核酸及び2つの採取源からのB型インフルエンザウイルス核酸AmericanTypeCultureCollectionATCCアクセッション番号を以下に示すを含み、各々を反応あたり105及び102コピーで個々に試験した。A型インフルエンザウイルスの陽性コントロール試料としては以下があげられる:A/PortChalmers/1/73H3N2ATCCVR-810、A/Mal/302/54MN1ATCCVR-98及びA/HongKong/8/68H3N2ATCCVR-544の分離株並びにFluA/BeijingH1N1のインビトロでのRNA転写物theCenterforDiseaseControlCDCAtlantaGAからの分離株。B型インフルエンザウイルスの陽性コントロール試料としては以下があげられる:B/Maryland/1/59ATCCVR-296のインビトロでのRNA転写物及びB/Lee/40ATCCVR-101の分離株。TMAベースのFluAアッセイは、配列番号89pmol/反応及び第1~3残基がLNAである配列番号2115pmol/反応のプライマー並びにTMAアンプリコンのリアルタイム検出のための配列番号29の分子ビーコンプローブ0.267pmol/反応を用いて行った。反応には、配列番号61及び62のプライマー各々0.5及び15pmol/反応を用いて増幅されたIC配列番号65のRNA転写物を200コピー/反応が含まれ、ICアンプリコンは配列番号63の分子ビーコンプローブ0.6pmol/反応を用いてリアルタイムに検出された。他の陽性コントロールを、公知の量のA型インフルエンザウイルス標的配列番号1のRNA転写物を反応毎2又は5対数コピーを含む試料を用いた以外は、同一の条件を用いて同時に試験した。TMAベースのFluBアッセイは、配列番号399pmol/反応及び第1~3残基がLNAである配列番号4415pmol/反応のプライマー並びにTMAアンプリコンのリアルタイム検出のための配列番号52の分子ビーコンプローブ0.267~0.32pmol/反応を用いて行った。反応には、配列番号64及び62のプライマー各々0.5及び15pmol/反応を用いて増幅されたIC配列番号65のRNA転写物を200コピー/反応が含まれ、ICアンプリコンは配列番号63の分子ビーコンプローブ0.6pmol/反応を用いてリアルタイムに検出された。陽性コントロールを、公知の量のB型インフルエンザウイルス標的配列番号32のRNA転写物を反応毎2又は5対数コピーを含む試料を用いた以外は、同一の条件を用いて同時に試験した。TMAベースのFluAアッセイでは、A型インフルエンザウイルス核酸を含有する全ての試験試料陽性シグナルの平均発生時間は13.9分であったについて陽性結果が、B型インフルエンザウイルス核酸を含有する全てのコントロール試料について陰性結果が得られた。同様に、TMAベースのFluBアッセイでは、B型インフルエンザウイルス核酸を含有する全ての試験試料陽性シグナルの平均発生時間は21.9分であったについて陽性結果が、A型インフルエンザウイルス核酸を含有する全てのコントロール試料について陰性結果が得られた。試験した試料中に含まれる通常の正常な病原性細菌種及び分離株ATCCアクセッション番号は以下のとおりである:BordetellabronchisepticaATCC10580、BordetellapertussisATCC8467、BordetellaparapertussisATCC15311、Burkholdiacepacia臨床分離株、CandidaalbicansATCC18804、CorynebacteriumstriatumATCC6940、EscherichiacoliATCC29214、EnterococcusfaecalisATCC19433、FluoribacterbozemaniiATCC33217、FluoribacterdumoffiiATCC33279、HaemophilusinfluenzaeATCC33391、HaemophilusparainfluenzaeATCC7901、KlebsiellapneumoniaeATCC23357、LegionellalongbeacheaeATCC33484、Legionellapneumophilasubsp.pneumophila3型ATCC33155;4型ATCC33156;6型ATCC33215及び11型ATCC43130、Legionellapneumophilasubsp.fraseri5型ATCC33216、MoraxellacattarhalisATCC25238、PseudomonasaeruginosaATCC27853及びATCC9027、ProteusmirabilisATCC25933、StaphylococcusaureusATCC25923、StaphylococcusepidermidisATCC14990、StreptococcusagalactiaeGBSATCC13813、StreptococcusgordoniiviridansstrepATCC33399、StreptococcusmutansATCC25175、StreptococcusoralisATCC10557、StreptococcuspneumoniaeATCC35088、StreptococcuspyogenesGASATCC12344及びTatlockiamicdadiaeATCC33204。分離株は、適当な培養液で培養し、1μlの細胞ループを、150μlの溶解試薬コハク酸緩衝界面活性溶液を含む超遠心管に加えて、ボルテックスして、95°C10分間インキュベートして細胞を溶解させた。溶解物は試験をするまで冷凍保存-20°Cし、アッセイに用いる前に解凍して水に希釈1:100した。微生物溶解物を用いて行ったFluA及びFluBアッセイでは、どの溶解物からも陽性反応は得られなかったが、陽性反応は、アッセイが微生物溶解物に存在する核酸と交差反応しなかった適当な試薬で適切に行われたことを示す内部コントロールICから検出された。陽性コントロールA型又はB型インフルエンザウイルス核酸含有は、各アッセイで目的とする標的のみに陽性結果をもたらし、目的とするウイルス標的のためのTMAベースのFluA及びFluBアッセイの特異性を証明した。アッセイを、潜在的な呼吸器系病原体である公知の非ヒトインフルエンザを用いて、TMAベースのFluA又はFluBアッセイの交差反応を試験するために同様に行った。以下のウイルスATCCアクセッション番号を含有する試料を試験した:1型アデノウイルスAdenoid71株、ATCCVR-1、4型アデノウイルスRI-67株、ATCCVR-4、7型アデノウイルスGomen株、ATCCVR-7、11型アデノウイルスSlobitski株、ATCCVR-12、18型アデノウイルスDC株、ATCCVR-19、29型アデノウイルスBP-6株、ATCCVR-272、コロナウイルス229Eグループ1型、ATCCVR-740、コロナウイルスOC43グループ2型、ATCCVR-759、1型パラインフルエンザウイルス臨床分離株及びATCCVR-1380、2型パラインフルエンザウイルス臨床分離株及びGreer株ATCCVR-92、3型パラインフルエンザウイルス臨床分離株、4a型パラインフルエンザウイルスM-25株、ATCCVR-1378、ライノウイルス臨床分離株及び呼吸器系合胞体ウイルスRSV臨床株;BWV/14617/‘85株、ATCCVR-1400及びA-2株、ATCCVR-1540。上記のウイルス及び4年間のインフルエンザの季節に採取した個々の臨床分離株を含む、計42のウイルス試料を試験した。ウイルスRNAを、核酸を支持体上で非特異的に収集して、収集した核酸を洗浄して、当該核酸を支持体から水溶液に溶出する標準的なプロトコールQIAAMP商標ViralRNAMiniVacuumProtocolQiagenIncを用いて抽出した。全てのウイルス核酸は、抽出後すぐに試験するか、試験するまで凍結保存-70~-80°Cした。試験した全ての非インフルエンザウイルス核酸では、FluA及びFluBアッセイ共に、非インフルエンザウイルス核酸については陰性結果をもたらしたが、アッセイが、非インフルエンザウイルス核酸と交差反応しない適当な成分で適切に行われたことを示すICについては陽性結果をもたらした。インフルエンザウイルス標的核酸を含む全ての陽性コントロールは、FluA及びFluBアッセイに特異的な、目的とする標的に適当な陽性反応をもたらした。すなわち、FluAアッセイは、B型インフルエンザウイルスではなくA型インフルエンザウイルスを検出したが、FluBアッセイは、A型インフルエンザウイルスでなく、B型インフルエンザウイルスを検出した。これらの結果は、FluA及びFluBアッセイが、その目的とするインフルエンザウイルス標的に特異的であり、呼吸器系試料に潜在的にみられる、他のヒトウイルス標的とは交差反応しないことを示す。インフルエンザウイルス検出のためのTMAベース及びPCRベースのアッセイの比較本実施例は、TMA及びPCRの増幅方法に基づく系特異的試験を用いた、A型インフルエンザウイルス及びB型インフルエンザウイルスの陽性検出のための時間を比較する試験を記載する。結果は、TMAベースアッセイは、リアルタイムRT-PCR法に基づくアッセイで得られた結果よりも迅速な検出結果をもたらしたことを示す。TMAベースのFluAアッセイは、配列番号93pmol/反応及び配列番号2115pmol/反応のプライマーを用いて配列番号1の標的RNA転写物反応毎1~7対数コピーを増幅し、配列番号29の蛍光粒子標識プローブ8pmol/反応を用いてアンプリコンを検出して、実質的に実施例1に記載したように行った。配列番号21のプライマーは、1つは完全DNAで、もう一つは、第1~3残基のLNAを欠いたDNAという2系統で別個に試験した。6複製アッセイを各条件で行った。TMAベースのFluBアッセイは、配列番号393pmol/反応及び配列番号44のプライマーを用いて配列番号32の標的RNA転写物反応毎1~7対数コピーを増幅して、配列番号52の蛍光粒子標識プローブ8pmol/反応を用いてアンプリコンを検出して、実質的に実施例1に記載したように行った。6複製アッセイを各条件で行った。FluAのリアルタイムRT-PCRアッセイは、配列番号68及び69のプライマーを同一のRNA標識をTMAベースのFluAアッセイで増幅するために用いて、及び、配列番号70の蛍光粒子標識プローブを増幅産物を検出するために用いて、実質的に上記のように行った。FluBのリアルタイムRT-PCRアッセイは、配列番号71及び72のプライマーを同一のRNA標識をTMAベースのFluBアッセイで増幅するために用いて、及び、配列番号73の蛍光粒子標識プローブを増幅産物を検出するために用いて、実質的に上記のように行った。含まれる各50μlの反応混合液には、標準試薬TAQMAN登録商標OneStepRTPCRMasterMixReagentsKitAppliedBiosystemsIncFosterCityCAが含まれ、製造業者から指示された条件で用いて、増幅及び検出はサーモサイクラー及び蛍光光度計の装置OPTICON商標2system又はCHR0M04商標RealtimePCRDetectorBioRadLaboratoriesIncHerculesCAを用いて行った。比較試験の結果は、FluAアッセイについては表5に、FluBアッセイについては、表6に示す。結果は、増幅反応開始から測定した、陽性シグナルの発生時間の平均meanとして示した算出した場合は±標準偏差。結果は、FluA及びFluBの標的について共に、同数の標的では、PCRベースアッセイで見られる陽性反応よりも前にTMAベースアッセイが陽性反応をもたらすことを示す。表5の結果は、LNA含有プライマーを用いたTMAベースのFluAアッセイが、特に標的が少ない試験では、完全DNAプライマーを用いたTMAベースアッセイと比較して、増幅動態が向上したことを示す。個々の実験では、TMAベースのFluBアッセイを、個々の反応で、配列番号39のプロモータープライマー3pmol/反応を異なる合成系の配列番号44のプライマーを組み合わせて完全DNA又は、第1~3位にLNAがあるDNA若しくは、第1~4位にLNAがあるDNAを全て15pmol/反応で用いた用いて、同様に行った。反応は、FluBのRNA転写物標的を反応毎に2.7及び3.7対数コピーで増幅し、アンプリコンを配列番号52の蛍光粒子標識プローブを用いて検出した。これらのアッセイの結果は、LNA含有の配列番号44のプライマーは、配列番号44の完全プライマーと比較すると、増幅及びアッセイ動態が向上したことを示す。臨床試料中のインフルエンザウイルスの検出本実施例は、リアルタイムでアンプリコンを検出するTMAベースのFluA及びFluBアッセイが、同数の19臨床試料で、リアルタイムRT-PCRベースアッセイを行った場合よりも、標的インフルエンザウイルスを含有する試料で迅速に陽性結果をもたらすことを示す。アッセイは、標的インフルエンザウイルスのRNA転写物を調製試料核酸のアリコートに置き換えて用いた以外は、実質的に実施例3に記載した方法で行った。TMAベースアッセイのいくつかには、実質的に実施例2に記載したICが含まれた。全てのアッセイには、陰性コントロール標的なし及び陽性コントロール目的とする標的インフルエンザウイルスのRNA転写物を2又は5対数コピーが含まれた。全ての陰性コントロールは陰性結果がもたらされた。TMAベースのFluAアッセイは、標的としてFluAのRNA転写物の代わりに調製臨床試料核酸のアリコートを用いた以外は実質的に上記のように行った。アッセイでは、配列番号8及び21のプライマー並びに配列番号29の蛍光粒子標識プローブを用いた。TMAベースアッセイは、IC標的配列番号65のRNA転写物を200コピー、配列番号61及び62のIC特異的プライマー及び配列番号63のIC特異的プローブを含むICを用いて行った。RT-PCRのFluAアッセイは、標的としてFluAのRNA転写物の代わりに調製臨床試料核酸のアリコートを用いた以外は実質的に上記のとおり行った。RT-PCRのFluAアッセイは、55サイクルのPCR増幅で配列番号68及び69のプライマー並びに配列番号70のプローブを用いた。TMAベースのFluBアッセイは、標的としてFluBのRNA転写物の代わりに調製臨床試料核酸のアリコートを用いた以外は実質的に上記のように行った。アッセイでは、配列番号39及び44のプライマー並びに配列番号48の蛍光粒子標識プローブを用いた。TMAベースアッセイは、IC標的配列番号65のRNA転写物を200コピー、配列番号64及び62のIC特異的プライマー及び配列番号63のIC特異的プローブを含むICを用いて行った。RT-PCRのFluBアッセイは、標的としてFluBのRNA転写物の代わりに調製臨床試料核酸のアリコートを用いた以外は実質的に上記のとおり行った。RT-PCRのFluBアッセイは、55サイクルのPCR増幅で配列番号71及び72のプライマー並びに配列番号73のプローブを用いた。FluAの臨床試料は、臨床試験研修室WardeMedicalCenterから提供され、A/BeijingH1N1分離株及び他の標本、又は、複数のインフルエンザの時期に患者から採取した分離株が含まれていた。FluBの臨床試料は6つの異なる分離株又は標本を示す。臨床試料は、増幅前に、非特異的方法QiAmpRNAextractionkits、製造業者が推奨する条件を用いてを用いて試料中の核酸を精製して処理した。臨床試料から単離された核酸を含有する溶出物の5μlのアリコートを反応ごとに用いた。FluA試験の結果を表7に示し、FluB試験の結果を表8に示した。表7の結果は、TMAベースの及びPCRベースアッセイでは、陽性の又は陰性の標本について矛盾のない結果が得られたことを示し、また、TMAベースアッセイの陽性試料についての発生時間が、ICを含むTMAベースアッセイを用いて試験した試料A1以外は、一貫してPCRベースアッセイで試験したのと同様の試料よりも迅速であったことを示す。陰性標本A11はTMAベースアッセイでICについて陽性結果をもたらし、その結果は、A型インフルエンザウイルスについて真に陰性であったことを示す。表8の結果は同様に、TMAベース及びPCRベースアッセイは、陽性のTMAベースアッセイの発生時間が、PCRベースアッセイよりも迅速であったこと以外は標本について矛盾のない結果をもたらした。完全なアッセイを行うのに要する合計時間、すなわち、単に増幅反応で検出されたシグナルの発生時間だけではない、上記時間は、同様の標的についてのPCRベースアッセイ約120分と比較して、FluA及びFlutB共にTMAベースアッセイの方が短かった約45分。化学発光プローブを用いたインフルエンザウイルスの増幅配列の検出本実施例は、A型インフルエンザウイルス又はB型インフルエンザウイルス核酸の転写関連増幅の後にA型インフルエンザウイルス又はB型インフルエンザウイルスの増幅配列に特異的なAE標識プローブを用いた増幅産物の検出をすることを含んだアッセイを示す。アンプリコンにハイブリダイズするプローブは、均一系アッセイフォーマットで検出される化学発光シグナルを発する。TMAベースのFluAアッセイでは、標準的なTMA反応を行って、2つのプライマー配列番号7、9又は11を配列番号21、22又は24と組み合わせたの異なる組み合わせを用いて、500,000コピーのFluA標的RNA配列番号1の転写物の配列を増幅した。増幅の前に、第7~8間の残基をAEで標識した配列番号26のプローブのハイブリダイゼーションをTMA反応で産生したアンプリコンの検出のために用いた。陰性コントロールは、FluA標的RNAを含まない反応混合物中で同一に行ったアッセイである。増幅の前に、アンプリコンをAE標識プローブにハイブリダイゼーション試薬中に60°C30分でハイブリダイズさせた後、室温で5分間冷却した。その後、非結合のプローブ中のAEラベルを、選択試薬を用いて60°C10分間の後15分間室温でインキュベートして選択的に加水分解した。化学発光シグナルを、検出試薬Iを用いて誘導して、その後検出試薬IIで中和して、化学発光を照度計LEADER登録商標HCGenProveIncorporatedで相対発光量RLUとして、実質的に上記したように検出した米国特許第5,283,174号及び第5,656,744号、Arnoldら及び米国特許第5,658,737号、Nelsonら第25欄第27~46行目;Nelsonetal1996Biochem3584298438at8432。アッセイの結果を表9に示す。均一系化学発光検出システムはまた、FluA特異的増幅オリゴマーの異なる組み合わせを用いることにより転写関連増幅の後にA型インフルエンザウイルス核酸を検出することも示す。FluB標的配列に特異的なプローブは、同様に、B型インフルエンザウイルス配列を特異的に検出することが示される。これらのアッセイでは、合成RNA標的配列番号33を2pmol/反応を、第8~9の残基が標識された配列番号48、第9~10の残基が標識された配列番号49及び第7~8の残基が標識された配列番号50のAE標識プローブで、TMA反応混合物を模倣する混合物中で混合して、実質的に上記のように検出工程を行った。すなわち、FluB標的配列の検出を、開始RNA標識からのアンプリケーションamplicationなしに直接行った。これらのアッセイ各条件n=5の平均的な結果を表10に示す。これらの結果は、B型インフルエンザウイルス標的配列が、TMAベースアッセイの増幅に起因する結果と類似の条件でAE標識プローブを用いて検出されることを示す。インフルエンザウイルス検出のためのTMAベースアッセイ本実施例は、TMAベースのFluA及びFluBアッセイが、インフルエンザウイルス検出を手動又は自動化装置を用いて行った場合に同程度の結果をもたらすことを示す。FluA及びFluBアッセイはともに、当該方法の工程を、各アッセイがアッセイの各標的、A型インフルエンザウイルス又はB型インフルエンザウイルスのための標的特異的オリゴマーを含有する以外は同一条件で行った。試料は、各アッセイFluAアッセイのための配列番号1のRNA転写物又はFluBアッセイのための配列番号32のRNA転写物を0、250、500、1000又は5000コピー/mlのための合成標的を含有するように調製し、各インフルエンザウイルス標的FluAアッセイに配列番号6及びFluBアッセイに配列番号35に特異的な標的捕捉プローブ200pmol/mlを含有する、0.5mlの最終容量中で標的捕捉試薬TCRと混合した。標的捕捉を、標的RNA、捕捉プローブ及びTCRを含有する混合物を62°C30分、その後、30分間室温でインキュベートした。捕捉したインフルエンザウイルス核酸がついた磁性粒子を、磁場を用いて容器の内部部分から分離して、試料溶液を取り除いた。粒子上の捕捉した標的核酸を1ml/反応の洗浄溶液で洗浄して、粒子を磁気的に分離して洗浄溶液を取り除いた。捕捉したインフルエンザウイルス標的核酸がついた洗浄した粒子を、75μlの適当な増幅オリゴマーFluAアッセイのための300pmol/mlの配列番号10及び500pmol/mlの第1~3残基にLNAがある配列番号21;FluBアッセイのための300pmol/mlの配列番号39及び500pmol/mlの第1~3残基にLNAがある配列番号44を含有するTMA用の核酸増幅試薬に懸濁した。TMA反応液を62°C10分、その後42°C5分でインキュベートして、TMA酵素を加えて混合し、インキュベーションを42°C60分間続けた。検出は、アッセイの目的とする標的に特異的なAE標識プローブFluAアッセイのための5X107RLU/mlの配列番号26及びFluBアッセイのための5X107RLU/mlの配列番号48を用いて、実質的に実施例5に記載したように行い、均一系アッセイフォーマットで発生した化学発光シグナルを検出して測定した。FluA及びFluBアッセイを、各アッセイ条件に10複製用いて各々行った。アッセイ工程は、手動又は自動化システムを用いて行った詳細は米国特許第6,605,213号及び第6,846,456号を参照。これらのアッセイの結果をFluAアッセイについては図1に、FluBアッセイについては図2に示す。図1は、手動で行ったアッセイ白又は自動化システムを用いて行ったアッセイ黒で、各々の試験したA型インフルエンザウイルス標的量250~5000コピー/mlについてTMAベースのFluAアッセイで検出されたシグナル平均RLUのグラフである。図2は、手動で行ったアッセイ白又は自動化システムを用いて行ったアッセイ黒で、各々の試験したB型インフルエンザウイルス標的量250~5000コピー/mlについてTMAベースのFluBアッセイで検出されたシグナル平均RLUのグラフである。図1及び図2に示された結果は、工程を手動で行っても自動化システムで行っても、双方のTMAベースアッセイは、各々目的とする標的インフルエンザウイルス核酸を250コピー/ml又はそれ以上検出したことを示す。"