有効成分として尿素及び尿素誘導体からなる群から選択される少なくとも一種の化合物を含む、溶液であることを特徴とする生物材料用透明化試薬。有効成分として尿素を含む、溶液であることを特徴とする請求項1に記載の生物材料用透明化試薬。水溶液であることを特徴とする請求項1又は2に記載の生物材料用透明化試薬。界面活性剤を含むことを特徴とする請求項1から3の何れか一項に記載の生物材料用透明化試薬。上記界面活性剤が非イオン性の界面活性剤であることを特徴とする請求項4に記載の生物材料用透明化試薬。上記非イオン性の界面活性剤が、TritonX登録商標、Tween登録商標、及びNP40商品名からなる群より選択される少なくとも一種であることを特徴とする請求項5に記載の生物材料用透明化試薬。水溶性の高分子化合物をさらに含むことを特徴とする請求項3から6の何れか一項に記載の生物材料用透明化試薬。水溶性の上記高分子化合物が、パーコール登録商標、フィコール登録商標、ポリエチレングリコール、及びポリビニルピロリドンからなる群より選択される少なくとも一種であることを特徴とする請求項7に記載の生物材料用透明化試薬。尿素を1M以上で8.5M以下の範囲内の濃度で、上記界面活性剤を0.025w/v以上で5w/v以下の範囲内の濃度で、水溶性の上記高分子化合物を2.5w/v以上で40w/v以下の範囲内の濃度でそれぞれ含むことを特徴とする請求項8に記載の生物材料用透明化試薬。さらに、グリセロール、カルボキシビニルポリマー、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、プロピレングリコール、及びマクロゴールからなる群より選択される少なくとも一種を含むことを特徴とする請求項1から9の何れかに記載の生物材料用透明化試薬。多細胞動物由来の組織又は器官、或いはヒトを除く多細胞動物を透明化するものであることを特徴とする請求項1から10の何れか一項に記載の生物材料用透明化試薬。請求項1から10の何れか一項に記載の生物材料用透明化試薬と、単離された生物材料とを含んでなり、当該生物材料を透明化するために生物材料の内部に生物材料用透明化試薬が浸潤していることを特徴とする生物材料透明化処理システム。請求項1から10の何れか一項に記載の生物材料用透明化試薬を、単離された生物材料中に浸潤して、当該生物材料を透明化する工程、を含むことを特徴とする生物材料の透明化方法。請求項13に記載の方法により透明化した生物材料に対して、平衡塩類溶液を浸潤することにより上記生物材料を透明化処理前の状態に戻す工程、を含むことを特徴とする透明化処理された生物材料の復元方法。請求項1から10の何れか一項に記載の生物材料用透明化試薬を含むことを特徴とする生物材料用透明化処理キット。FocusClear溶液は、透明化を行う有効成分としてジメチルスルホキシドDMSO等を含むことから生組織に用いることは難しく、適用対象が専ら固定化サンプルに限定されるという問題がある。加えて、FocusClear溶液は、非常に複雑な組成からなるため、その調製が複雑で、かつ非常に高価であるという問題がある。さらに、FocusClear溶液は、蛍光タンパク質を用いた観察が可能である旨を示唆しているものの、神経系組織の収縮を引き起こし、かつ神経系組織の深部では充分に濁りが取り除かれないという問題がある。Dodtらのtissueclearingmethodも、透明化のステップに有機溶剤を多用することが必須なため生組織に用いることは難しく、適用対象が専ら固定化サンプルに限定されるという問題がある。また、tissueclearingmethodは、上記の通り有機溶剤の多用が必須なため、ほぼ全ての蛍光タンパク質にダメージを与える。そのため、蛍光タンパク質を用いた組織観察が困難になるという問題もある。さらに、上記のtissueclearingmethodは、用いる組成の性質から、透明化処理の対象となる組織の脱水を伴い、当該組織が不可逆的に収縮するという問題がある。本願発明は、上記の課題を解決するためになされたものであり、有効成分として生物親和性のより高い成分を用いた新規な生物材料用透明化試薬、及びその利用を提供することを目的とする。上記の課題を解決するために、本願発明者らは鋭意検討を行なった。その結果、生物親和性に優れた成分の中で尿素に生物材料の透明化能があることを新たに見出し、本願発明を想到するに至った。すなわち、本発明にかかる生物材料用透明化試薬は、有効成分として尿素及び尿素誘導体からなる群から選択される少なくとも一種の化合物を含む、溶液であることを特徴としている。本発明はまた、上記何れかの生物材料用透明化試薬と、単離された生物材料とを含んでなり、当該生物材料を透明化するために生物材料の内部に生物材料用透明化試薬が浸潤している生物材料透明化処理システムを提供する。本発明にかかる生物材料の透明化方法は、上記何れかの生物材料用透明化試薬を、単離された生物材料中に浸潤して、当該生物材料を透明化する工程、を含むことを特徴としている。本発明にかかる透明化処理された生物材料の復元方法は、上記の方法により透明化した生物材料に対して、平衡塩類溶液を浸潤することにより上記生物材料を透明化処理前の状態に戻す工程を含むことを特徴としている。本発明はまた、上記何れかの生物材料用透明化試薬を含む生物材料用透明化処理キットを提供する。本発明は、有効成分として生物親和性のより高い成分を用いた新規な生物材料用透明化試薬、及びその利用を提供することが出来るという効果を奏する。以下、本発明の実施の形態について詳細に説明する。生物材料用透明化試薬の有効成分本発明にかかる生物材料用透明化試薬とは、生物材料を透明化する必須の有効成分として尿素を含む、溶液である。本発明にかかる他の態様における生物材料用透明化試薬は、生物材料を透明化する必須の有効成分として尿素誘導体を含む、溶液である。上記尿素誘導体の種類は特に限定されないが具体的には例えば、各種のウレイン、又は、下記の一般式1に示す化合物である。なお、一般式1に示す化合物には一部のウレインが含まれる。本発明にかかる生物材料用透明化試薬は、尿素及び尿素誘導体からなる群から選択される少なくとも1種の化合物を有効成分として含んでいればよいが、これらの中で尿素を含むことがより好ましい。一般式1に示す尿素誘導体において、R1、R2、R3、R4は、互いに独立に水素原子但し、R1~R4の全てが水素原子の場合は尿素自体に相当するので除かれる、ハロゲン原子、又は炭化水素基であり、炭化水素基を構成する炭素原子が複数個ある場合には当該炭素原子の一部が、窒素原子、酸素原子、硫黄原子等のヘテロ原子により置換されていてもよい。炭化水素基としては、鎖状炭化水素基、及び環状炭化水素基が含まれる。上記鎖状炭化水素基として、例えば、鎖状アルキル基、鎖状アルケニル基、及び鎖状アルキニル基等が例示される。鎖状炭化水素基を構成する炭素数は特に限定されないが、例えば、6以下の直鎖状又は分岐状のものが挙げられ、好ましくは炭素数が1~3のアルキル基である。鎖状炭化水素基は、例えば、ハロゲン原子等の置換基を有していてもよい。鎖状アルキル基の例としては、メチル基、エチル基、プロピル基、イソプロピル基、ブチル基、iso-ブチル基、sec-ブチル基、tert-ブチル基、ヘキシル基、オクチル基等が挙げられる。上記環状炭化水素基として、例えば、シクロアルキル基、及びシクロアルケニル基等が例示される。環状炭化水素基は、例えばハロゲン原子等の置換基を有していてもよい。シクロアルキル基の例としては、シクロプロピル基、シクロブチル基、シクロペンチル基、シクロヘキシル基、等の、炭素数が3以上で、好ましくは6以下のものが挙げられる。シクロアルケニル基の例としては、シクロヘキセニル基等の、炭素数が3以上で、好ましくは6以下のものが挙げられる。上記ハロゲン原子としては、フッ素原子、塩素原子、臭素原子、ヨウ素原子等が挙げられる。また、一般式1に示す尿素誘導体のより好ましい具体例は、以下の1~2に示す通りである。1R1~R4より選択される任意の3つの基が水素原子であり、残りの1つの基がハロゲン原子、又は炭素数1~6以下の鎖状炭化水素基である。より好ましくは残りの1つの基が、炭素数1~3、又は炭素数が1~2のアルキル基である。2R1~R4より選択される任意の2つの基が水素原子であり、残りの2つの基が互いに独立にハロゲン原子、又は炭素数1~6以下の鎖状炭化水素基である。より好ましくは残りの2つの基が何れも、炭素数1~3、又は炭素数が1~2のアルキル基である。なお、水素原子となる2つの基の一方はR1、R2の何れかから選ばれ、他方はR3、R4の何れかから選ばれることがより好ましい。有効成分として尿素等を用いる利点尿素は、毒性が極めて低い生体由来の成分である。そのため、本発明に係る生物材料用透明化試薬は、1固定化された生物材料はもとより、固定化されていない生きた生物材料の透明化にも用いうるものとなる。2また、尿素は、蛍光タンパク質へのダメージ、及びその蛍光の消失が比較的少なく、蛍光タンパク質を用いた生物材料の観察にも適用しうるものとなる。3尿素は、極めて安価で入手容易でもあり、かつ取扱い性に優れるため、極めて低コストかつ簡単な手順で透明化処理を行いうるものとなる。また、上記の利点に加えて、4従来の生物材料用透明化試薬と比較して、光散乱性が高い不透明な生物材料の透明性を格段に向上させることができ、超深部組織に存在する種々の蛍光タンパク質および蛍光物質の観察が可能となる。5特に脳組織では、これまで深部観察のバリアーであった白質層を透明化することが可能となり、白質層より深部に位置する領域例えば脳梁の観察が可能となる。6本発明の試薬による透明化処理は可逆的である。具体的には、透明化処理後の生物材料を平衡塩類溶液に浸漬するのみで、透明化処理前の状態に戻すことが可能である。透明化処理の前後においてタンパク質等の抗原性も変化せずに保存されるため、通常の組織染色、及び免疫染色の手法を用いた分析が可能である。なお、尿素に代えて上記した尿素誘導体を用いることによっても、同様の利点が得られうる。界面活性剤本発明に係る生物材料用透明化試薬は、必要に応じて界面活性剤を含んでいてもよい。界面活性剤は、生物組織への本試薬の侵入を緩やかに向上させるという理由から、非イオン性の界面活性剤が好ましい。非イオン性の界面活性剤として、ポリオキシエチレンソルビタンモノラウレート、ポリオキシエチレンソルビタンモノパルミテート、ポリオキシエチレンソルビタンモノステアレート、及びポリオキシエチレンソルビタンモノオレエート等の脂肪酸系;ポリビニルアルコール等の高級アルコール系;ポリオキシエチレンオクチルフェニルエーテル等のアルキルフェノール系の界面活性剤が挙げられる。具体的には、例えば、TritonX-100、及びTritonX140等のTritonX登録商標シリーズ;Tween-20、Tween40、Tween60、及びTween80等のTween登録商標シリーズ;NP40商品名;からなる群より選択される少なくとも一種が挙げられる。界面活性剤は、必要に応じて、二種以上を混合して使用することもできる。これら界面活性剤は、尿素の、生物材料に対する浸透性を高め、透明化処理の効率を向上させうる。特に、脳組織の白質層等、のように、透明化処理が比較的困難な生物材料の透明化を行う場合には、生物材料用透明化試薬は界面活性剤を含むことが好ましい。なお、上記界面活性剤は、尿素に対するのと同様に、生物材料に対する尿素誘導体の浸透性を高めうる。水溶性の高分子化合物本発明に係る生物材料用透明化試薬は、必要に応じて水溶性の高分子化合物をさらに含んでいてもよい。ここで、高分子化合物とは、分子量が例えば5万~6万程度以上の大きさであって、細胞内に実質的に侵入しないものである。また、高分子化合物は、生物材料の変性等を引き起こさないものが好ましい。水溶性の高分子化合物として、具体的には、例えば、架橋型シュークロース高分子物質、ポリエチレングリコール、ポリビニルピロリドン、又はパーコール商品名。コロイド状シリカをポリビニルピロリドン皮膜で被覆した高分子物質等が挙げられる。架橋型シュークロース高分子物質として、具体的には例えば、フィコールFicollPM70商品名のような、シュークロースをエピクロルヒドリンで架橋共重合した重量平均分子量約7万の高分子物質等が挙げられる。これら水溶性の高分子化合物は、尿素及び尿素誘導体とは異なり細胞内に浸入することがなく、また水溶性であるから、細胞内外の浸透圧差の調整に寄与すると考えられる。そのため、透明化処理の対象となる生物材料の原型維持に寄与し、とりわけ、生物材料の膨張の防止に寄与する。特に限定されないが、本発明に係る生物材料用透明化試薬の浸透圧が比較的高い場合には、当該試薬はこれら水溶性の高分子化合物を含むことが好ましい。その他の成分本発明に係る生物材料用透明化試薬は、必要に応じて、グリセロール、カルボキシビニルポリマー、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、プロピレングリコール、ならびにマクロゴールから選択される少なくとも一種の化合物を乾燥抑制成分として含むことができる。乾燥抑制成分は、透明化処理の対象となる生物材料の乾燥を防止する。とりわけ、透明化処理後に光学顕微鏡による観察に供されるまでの時間が比較的長い場合、或いは、光学顕微鏡による長時間観察に供される場合には、本発明の試薬は、上記の乾燥抑制成分を含むことが好ましい。また、本発明に係る生物材料用透明化試薬は、上述した尿素及び/又は尿素誘導体、界面活性剤及び水溶性の高分子化合物以外に、例えば、pH調整剤、及び浸透圧調整剤等の添加剤を必要に応じて含んでいてもよい。溶媒本発明に係る生物材料用透明化試薬は、尿素が可溶な溶媒を含む溶液である。溶媒の種類は、尿素が可溶な限り特に限定されないが、水を主溶媒として用いることが好ましく、水のみを溶媒として用いることが特に好ましい。なお、本発明において、水を主溶媒として用いるとは、使用される全溶媒に占める水の体積の割合が他の溶媒と比較して最も多いことを指し、好ましくは使用される全溶媒の体積の合計の50を超え100以下の量の水を用いることを指す。また、水を主溶媒として用いて調製された生物材料用透明化試薬を、水溶液としての生物材料用透明化試薬と称する。なお、水を主溶媒として用いた場合には、例えば、固定化した標本にはジメチルスルホキシドDMSOを水と混合し用いてもよい。例えば固定化した標本にDMSOを混合して用いれば、生物材料に対する試薬の浸透性の向上、及び角質表面を有する組織の透明化処理促進等の効果が期待される。溶媒として水を用いる主な利点は、以下の通りである。1本発明に係る生物材料用透明化試薬の有効成分である尿素は水への溶解性に優れているため、生物材料用透明化試薬の調製が容易かつ低コストとなる。2有機溶剤を主溶媒として用いる場合と比較して、透明化処理時に処理対象となる生物材料の脱水を伴わない。そのため、生物材料が収縮するという問題を抑制可能となる。3有機溶剤を主溶媒として用いる場合と比較して、蛍光タンパク質に損傷を与える可能性が著しく低減される。そのため、透明化処理を受けた生物材料を、蛍光タンパク質を用いて観察可能となる。4固定化された材料に限定されず、生材料の透明化処理に適用可能となる。5後述するように透明化処理が可逆的となり、透明化処理後の生体試料を必要に応じて透明化処理前の状態に戻すことができる。6有機溶剤を主溶剤として用いる場合と比較して、取り扱いの安全性がより高くなる。また、本発明に係る生物材料用透明化試薬は、透明化処理の対象となる生物材料に好適なpHの維持が可能な緩衝液であってもよい。さらに、本発明に係る生物材料用透明化試薬は、透明化処理の対象となる生物材料の変形を招来せず、かつ生物材料内に尿素が充分に浸透する程度に、その浸透圧が調整されていてもよい。なお、尿素誘導体に関しても、尿素と同様の上記溶媒を用いることができる。組成物の量的関係本発明に係る生物材料用透明化試薬における尿素の含有量は、生物材料の透明化処理が進展する限りにおいて特に限定されない。なお、尿素の含有量の上限は、使用する溶媒に対する尿素の溶解度により決定される。対象とする生物材料の種類にも依存するが、例えば、生物材料用透明化試薬における尿素の含有量が比較的少ない場合には処理時間を長くし、尿素の含有量が比較的多い場合には処理時間を短くすることで必要な透明化処理を行うことができる。しかしながら、透明化処理を様々な程度で実現可能となるという観点からは、1M以上で85M以下の範囲内の濃度であることが好ましく、3.5M以上で8.5M以下の範囲内の濃度であることがより好ましく、4M以上で8M以下の範囲内の濃度であることが特に好ましい。また、尿素に代えて尿素誘導体又は尿素と尿素誘導体との混合物を用いる場合にも、尿素と同じ含有量に設定することが出来る。また、界面活性剤を使用する場合、その含有量は特に限定されないが、0.025w/v以上で5w/v以下の範囲内の濃度で含むことが好ましく、0.05w/v以上で0.5w/v以下の範囲内の濃度で含むことがより好ましく、0.05w/v以上で0.2w/v以下の範囲内の濃度で含むことが特に好ましい。なお、単位w/vとは、生物材料用透明化試薬の体積vミリリットルに対する、使用する界面活性剤の重量wグラムの百分率である。また、水溶性の高分子化合物を使用する場合、その含有量は特に限定されないが、2.5以上で40w/v以下の範囲内の濃度で含むことが好ましい。また、生物材料の膨張抑制効果と透明化処理後の屈折率とのバランスという観点では、上記含有量は、5w/v以上で25w/v以下の範囲内の濃度で含むことがより好ましく、10w/v以上で20w/v以下の範囲内の濃度で含むことがより好ましく、10w/v以上で15w/v以下の範囲内の濃度で含むことが特に好ましい。なお、単位w/vとは、生物材料用透明化試薬の体積vミリリットルに対する、使用する水溶性の高分子化合物の重量wグラムの百分率である。また、グリセロール等の乾燥抑制成分を使用する場合、その含有量は特に限定されないが、2.5w/v以上で20w/v以下の範囲内の濃度で含むことが好ましく、5w/v以上で15w/v以下の範囲内の濃度で含むことがより好ましく、8w/v以上で12w/v以下の範囲内の濃度で含むことが特に好ましい。なお、単位w/vとは、生物材料用透明化試薬の体積vミリリットルに対する、使用する乾燥抑制成分の重量wグラムの百分率である。対象となる生物材料本発明の生物材料用透明化試薬を用いた透明化処理の対象となる生物材料の種類は特に限定されないが、植物由来の材料又は動物由来の材料が好ましく、魚類、両生類、爬虫類、鳥類又は哺乳類哺乳動物等の動物由来の材料がより好ましく、哺乳動物由来の材料が特に好ましい。また、哺乳動物の種類は特に限定されないが、マウス、ラット、ウサギ、モルモット、ヒトを除く霊長類等の実験動物;イヌ、ネコ等の愛玩動物ペット;ウシ、ウマ等の家畜;ヒト;が挙げられる。また、生物材料は、個体そのものであってもよく生きているヒト個体そのものは除く、多細胞生物の個体から取得した器官、組織、或いは細胞であってもよい。本発明の生物材料用透明化試薬は優れた透明化処理能力を有するので、生物材料が、多細胞動物由来の組織又は器官例えば、脳全体又はその一部、或いはヒトを除く多細胞動物の個体例えば、胚等そのものであっても透明化処理を適用可能である。また、上記の生物材料は、顕微鏡観察用に固定化fixed処理された材料であってもよく、固定化されていない材料であってもよい。なお、固定化された材料を用いる場合には、固定化処理後に、例えば20w/vショ糖-PBS溶液に、充分に例えば、24時間以上浸漬する処理を行うことが好ましい。さらに、当該材料をOCTcompundに包埋して液体窒素で凍結後、PBS中で解凍し、4w/vPFA-PBS液で再度固定する処理を行うことが好ましい。上記生物材料は、具体的には例えば、蛍光性化学物質を注入した生体組織、蛍光性化学物質で染色を行った生体組織、蛍光タンパク質を発現した細胞を移植した生体組織、または蛍光タンパク質を発現した遺伝子改変動物の生体組織等であってもよい。生物材料用透明化試薬の特に好適な組成の一例本発明にかかる生物材料用透明化試薬の特に好適な組成の例示は以下の通りである。これらの透明化試薬は、特に、マウス等の哺乳動物の脳全体、脳の一部例えば、海馬、大脳全体又は大脳の一部、及び胚を透明化処理する目的で、極めて好適である。なお、後述する実施例1から9で用いた生物材料用透明化試薬も、以下の透明化試薬1~4の条件を満たすものである。生物材料用透明化試薬1:水に、尿素を4M以上で8M以下の範囲内の濃度で溶解した水溶液。生物材料用透明化試薬2:水に、尿素を4M以上で8M以下の範囲内の濃度で、非イオン性の界面活性剤例えば、TritonX100を0.05w/v以上で0.2w/v以下の範囲内の濃度で、さらに乾燥抑制成分例えば、グリセロールを8w/v以上で12w/v以下の範囲内の濃度で含ませてなる水溶液。生物材料用透明化試薬3:水に、尿素を4M以上で8M以下の範囲内の濃度で、非イオン性の界面活性剤例えば、TritonX100を0.05w/v以上で0.2w/v以下の範囲内の濃度で、乾燥抑制成分例えば、グリセロールを8w/v以上で12w/v以下の範囲内の濃度で、さらに水溶性の高分子化合物例えば、Ficollを5w/v以上で25w/v以下の範囲内の濃度で含ませてなる水溶液。生物材料用透明化試薬4:水に、尿素を4M以上で8M以下の範囲内の濃度で、非イオン性の界面活性剤例えば、TritonX-100を0.05w/v以上で0.2w/v以下の範囲内の濃度で、ジメチルスルホキシドDMSOを8w/v以上で12w/v以下の範囲内の濃度で含ませてなる水溶液。なお、尿素に代えて尿素誘導体又は尿素と尿素誘導体との混合物を用いる場合には、上記した尿素と同じ濃度で尿素誘導体等を用いて、生物材料用透明化試薬1~4を調製すればよい。生物材料用透明化試薬の調製本発明にかかる生物材料用透明化試薬の調製方法は、尿素及び/又は尿素誘導体、並びに、必要に応じて用いる界面活性剤、水溶性の高分子化合物、及び乾燥抑制成分等を、溶媒中に溶解することで調製される。溶媒中に溶解、又は混合する手順は特に限定されない。生物材料用透明化試薬を用いた透明化処理法の一例本発明にかかる生物材料用透明化試薬を用いた生物材料の透明化処理方法は、上記の生物材料に対して生物材料用透明化試薬を浸潤させる工程透明化処理工程を含む方法である。より具体的には、透明化処理用の容器内で、上記の生物材料に対して生物材料用透明化試薬を浸潤させる。上記の透明化処理工程において、透明化処理用の容器内に生物材料用透明化試薬と生物材料とを格納する順序は特に限定されないが、まず生物材料用透明化試薬を格納し、次いで生物材料を格納するすなわち、生物材料用透明化試薬に生物材料を投入することが好ましい。上記の透明化処理工程を行う処理温度は特に限定されないが、15°C以上で45°C以下の範囲内であることが好ましい。また、透明化処理を行う処理時間は、特に限定されないが、2時間以上で6ヶ月以内の範囲内であることが好ましく、12時間以上で7日以内の範囲内であることがより好ましい。また、透明化処理を行う圧力は特に限定されない。上記の透明化処理工程で用いた、透明化処理された生物材料を格納した処理容器は、後述する観察工程に供されるまで、例えば、室温又は低温環境下で保存してもよい透明化試料保存工程。透明化処理された生物材料の観察工程透明化処理された生物材料は、次いで、例えば、光学顕微鏡による観察工程に供される。観察工程に供される生物材料は、必要に応じて、上記透明化処理工程の事前に、又は透明化処理工程後で観察工程前に、染色或いはマーキング等の可視化処理工程が施されてもよい。例えば、可視化処理工程に蛍光タンパク質を用いる場合には、透明化処理工程の事前に、生きた生物材料に対して蛍光タンパク質遺伝子を導入して、蛍光タンパク質を発現させる。また、可視化処理工程として、蛍光性化学物質蛍光タンパク質は除くの生物材料への注入、又は蛍光性化学物質を用いた生物材料の染色を行う場合には、上記透明化処理工程の事前に行うことが好ましいが、上記透明化処理工程後に行うこともできる。さらに、可視化処理工程として、蛍光性化学物質以外の化学物質を用いた染色を行うこともできる。観察工程は、あらゆる種類の光学顕微鏡を用いて行うことができる。例えば、観察工程は、3次元超分解顕微鏡技術例えば、STED、3DPALM、FPALM、3DSTORM、及びSIMを適用して行うこともできる。また、観察工程は、多光子励起型一般的には2光子励起型の光学顕微鏡技術を適用して行うことが好ましい。その他の応用本発明に係る生物材料用透明化試薬を用いた透明化処理は可逆的である。そのため、透明化処理された生物材料は、例えば、平衡塩類溶液に浸漬することにより、生物材料透明化試薬の成分を取り除き、透明化処理前の状態に戻すことが可能である。ここで、平衡塩類溶液とは、具体的には例えば、PBS、HBSSなどリン酸塩によって緩衝液化された平衡塩類溶液;トリス塩酸塩によって緩衝液化された平衡塩類溶液;人工脳脊髄液;MEMDMEM及びHam’sF12などの細胞培養用の基礎培地;等が挙げられる。上記生物材料用透明化試薬を用いた場合、透明化処理の前後において、或いは、透明化処理後に透明化処理前の状態に戻す場合において、生物材料に含まれるタンパク質等の変性等を招来しない。そのため、生物材料に含まれるタンパク質等の抗原性も変化せずに保存される。そのため、例えば、生物材料を透明化処理して光学顕微鏡による観察を行った後に、当該生物材料を透明化処理前の状態に戻して汎用の組織染色、又は免疫染色の手法を用いた詳細分析を行うことなども可能となる。生物材料用透明化処理キット本発明にかかる生物材料用透明化処理キットは、上記の生物材料用透明化試薬を備える。生物材料用透明化処理キットは、さらに、上記の透明化処理工程で用いる処理容器、生物材料把持器具ピンセット等、透明化処理後の生物材料を透明化処理前の状態に戻す平衡塩類溶液、及びキットの取扱説明書から選択される少なくとも一つを備えていてもよい。生物材料透明化処理システム本発明に係る生物材料透明化処理システムは、本発明に係る生物材料用透明化試薬と、単離された上記生物材料とを含んでなり、この生物材料を透明化するために当該生物材料の内部に生物材料用透明化試薬が浸潤したものである。すなわち、当該処理システムとは、例えば、透明化処理の途中段階にある生物材料を含む処理システム、又は、透明化処理が完了した生物材料を含む処理システムを包含する概念である。本発明に係る様々な態様以上のように、本発明にかかる生物材料用透明化試薬は、有効成分として尿素及び尿素誘導体からなる群から選択される少なくとも一種の化合物を含む、溶液であることを特徴としている。本発明にかかる生物材料用透明化試薬は、上記の構成において、有効成分として尿素を含む、溶液であることがより好ましい。本発明にかかる生物材料用透明化試薬は、上記の構成において、水溶液であることがより好ましい。本発明にかかる生物材料用透明化試薬は、上記の構成において、界面活性剤を含むことがより好ましい。本発明にかかる生物材料用透明化試薬は、上記の構成において、上記界面活性剤が非イオン性の界面活性剤であることがより好ましい。本発明にかかる生物材料用透明化試薬は、上記の構成において、上記非イオン性の界面活性剤が、TritonX登録商標、Tween登録商標、及びNP40商品名からなる群より選択される少なくとも一種であることがより好ましい。本発明にかかる生物材料用透明化試薬は、上記の構成において、水溶性の高分子化合物をさらに含むことがより好ましい。本発明にかかる生物材料用透明化試薬は、上記の構成において、水溶性の上記高分子化合物が、パーコール登録商標、フィコール登録商標、ポリエチレングリコール、及びポリビニルピロリドンからなる群より選択される少なくとも一種であることがより好ましい。本発明にかかる生物材料用透明化試薬は、上記の構成において、尿素を1M以上で8.5M以下の範囲内の濃度で、上記界面活性剤を0.025w/v以上で5w/v以下の範囲内の濃度で、水溶性の上記高分子化合物を2.5w/v以上で40w/v以下の範囲内の濃度でそれぞれ含むことがより好ましい。本発明にかかる生物材料用透明化試薬は、さらに、グリセロール、カルボキシビニルポリマー、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、プロピレングリコール、及びマクロゴールからなる群より選択される少なくとも一種を含むことがより好ましい。本発明にかかる生物材料用透明化試薬は、多細胞動物由来の組織又は器官、或いはヒトを除く多細胞動物を透明化するものであることが好ましい。本発明はまた、上記何れかの生物材料用透明化試薬と、単離された生物材料とを含んでなり、当該生物材料を透明化するために生物材料の内部に生物材料用透明化試薬が浸潤している生物材料透明化処理システムを提供する。本発明にかかる生物材料の透明化方法は、上記何れかの生物材料用透明化試薬を、単離された生物材料中に浸潤して、当該生物材料を透明化する工程、を含むことを特徴としている。本発明にかかる透明化処理された生物材料の復元方法は、上記の方法により透明化した生物材料に対して、平衡塩類溶液を浸潤することにより上記生物材料を透明化処理前の状態に戻す工程を含むことを特徴としている。本発明はまた、上記何れかの生物材料用透明化試薬を含む生物材料用透明化処理キットを提供する。本発明について、以下の実施例、及び比較例等に基づいてより具体的に説明するが、本発明はこれに限定されない。実施例1:海馬の観察灌流固定工程神経系のニューロンに蛍光タンパク質YFPを発現したトランスジェニックマウスYFP-Hline:米国Harvard大学JoshSanes教授より供与されたもの。参考文献FengetalNeuron2841512000の生後7-8週齢のものを用い、ペリスタポンプを用いて左心室より氷冷PBSを灌流した後、氷冷固定液4パラホルムアルデヒド-PBSpH7.4を灌流してマウスの全身を完全に固定した。生物材料の摘出及び固定工程次いで、マウスの頭蓋骨を除去して、海馬を注意深く摘出した。そして、摘出した海馬を氷冷固定液4パラホルムアルデヒド-PBSpH7.4に一晩、4°Cの環境下で浸漬した。その後、この海馬を、20シュークロース-PBS溶液中に移し24時間、4°Cの環境下で緩やかに振盪した。次いで、海馬の組織を20シュークロース-PBS溶液で完全に置換した後、OCTcompound中に包埋し、液体窒素を用いて凍結した。そして、凍結後の海馬を、PBS中に移し室温で解凍した。解凍後の海馬は、再び、4パラホルムアルデヒド-PBS中で1時間再固定した。生物材料の透明化処理及び観察工程最後に、再固定した海馬を、本実施例に係る生物材料用透明化試薬に3日間、浸漬し、室温で振盪した。生物材料用透明化試薬は、4M濃度の尿素を純水に溶解した水溶液である。透明化が進んだ時点処理開始から3日後で、アガロースゲル濃度0.5w/v以下中に海馬を封入し、920nmの波長のレーザーを備えた正立型2光子顕微鏡商品名FV1000MPE:オリンパス社製で、海馬の基底側から表面側まで観察を行った。なお、観察に用いた対物レンズの作動距離workingdistanceは2mmであった。観察の結果は、図1に示す。図1に示すように、本実施例に係る生物材料用透明化試薬で透明化処理を行うことで、歯状回DentateGyrus:DG、CA1、及び海馬表面までをカバーした約1.9mmの深度生物材料の厚みに相当にわたるクリアな観察が可能であった。実施例2:海馬の観察、及び試薬の検討上記生物材料の透明化処理工程で用いる生物材料用透明化試薬として、4M濃度の尿素、0.1w/v濃度のTritonX-100、10w/v濃度のグリセロールを純水に溶解した水溶液SCALE-A2試薬と呼称を用いた点、及び、海馬の表面側から基底側へ観察を行った点以外は、上記実施例1と同じ方法に従い、マウスの海馬の観察を行った。観察の結果は、図2に示す。図2に示すように、本実施例に係る生物材料用透明化試薬で透明化処理を行うことで、海馬表面、CA1、歯状回DG、及び海馬基底までをカバーした約2mmの深度生物材料の厚みに相当にわたるクリアな観察が可能であった。実施例3:大脳の観察以下の点1~3以外は、実施例1と同じ方法に従い、マウスの大脳の観察を行った。1上記生物材料の摘出及び固定工程において大脳全体を摘出し、この大脳を固定したものを生物材料として用いた点。2上記生物材料の透明化処理及び観察工程において、実施例2と同一のSCALE-A2試薬を生物材料用透明化試薬として用いた点。3上記生物材料の透明化処理及び観察工程において、作動距離が3mmの対物レンズを用いて大脳の表面大脳皮質側から海馬側に向けて観察を行った点。観察の結果は、図3に示す。図3に示すように、本実施例に係る生物材料用透明化試薬で透明化処理を行うことで、大脳皮質、V-VI層はもちろん、大脳皮質下部の白質領域corpuscallosumを越え、さらに海馬の繊維叢fibertractを越えて、CA1及び歯状回DG等を構成する細胞群までをカバーした約3mmの深度対物レンズの作動限界にわたるクリアな観察が可能であった。なお、従来の透明化試薬では、大脳皮質下部の白質領域を透明化することが出来なかったため、白質領域より深部の領域を観察することは不可能であった。実施例4:試薬の検討以下の条件に従い、SCALE-A2試薬が生物材料を膨潤させる程度の評価、及びFicollを併用した膨潤抑制の効果について評価をした。1まず、透明化処理の期間を2日間とした以外は、実施例3に記載の方法に従い、SCALE-A2試薬を用いてマウスの大脳の透明化処理を行った。そして、透明化処理後の大脳の体積を測定した。なお、透明化処理の期間を2日間確保すれば、マウスの大脳は、観察可能な程度に透明化されていた。2また、透明化試薬として、SCALE-A2試薬にFicollを5w/v濃度、或いは20w/v濃度、添加したものを用いた以外は、上記1と同様にしてマウスの大脳の透明化処理を行った。そして透明化処理後の大脳の体積をそれぞれ測定した。3コントロールとして、PBS中に浸漬した直後0日間のマウスの大脳の体積を測定した。観察の結果は、図4に示す。図4に示すように、コントロール図中でPBSと示すと比較して、上記1の処理を行ったもの図中でSCALE-A2と示すは膨潤し、上記2の処理を行ったものはFicollの添加量に応じて膨潤が抑制された。特に、20w/v濃度のFicollを添加した透明化試薬を用いることで、膨潤が85以上抑制された図中でSCALE-A220Ficollと示す。なお、膨潤又は退縮が見られないものが特に好ましいが、膨潤又は退縮が見られた大脳も、光学顕微鏡観察用の試料として用いることは可能である。実施例5以下の点12以外は、実施例1と同じ方法に従い、マウスの大脳の観察を行った。1生物材料の透明化処理及び観察工程において、4M濃度の尿素、0.1w/v濃度のTritonX-100、10w/v濃度のグリセロール、及び10w/v濃度のFicollを純水に溶解した水溶液を生物材料用透明化試薬として用い、3日間の透明化処理を行った点。2生物材料の透明化処理及び観察工程において、作動距離が2mmの対物レンズを用いて大脳の表面大脳皮質側から海馬側に向けて観察を行った点。観察の結果は、図5に示す。図5に示すように、本実施例に係る生物材料用透明化試薬で透明化処理を行うことで、大脳皮質、V-VI層はもちろん、大脳皮質下部の白質領域corpuscallosumを越え、さらに海馬の繊維叢fibertractを越えて、CA1等を構成する細胞群までをカバーした約2.16mmの深度対物レンズの作動限界にわたるクリアな観察が可能であった。なお、従来の透明化試薬では、大脳皮質下部の白質領域を透明化することが出来なかったため、白質領域より深部の領域を観察することは不可能であった。実施例6:光透過率の評価水、PBS、8M濃度の尿素水溶液透明化試薬、4M濃度の尿素水溶液透明化試薬、透明化試薬SCALE-A24M濃度の尿素、0.1w/v濃度のTritonX-100、10w/v濃度のグリセロールを含む水溶液、及び透明化試薬SCALE-D24M濃度の尿素0.1w/v濃度のTritonX-100、10w/v濃度のDMSOを含む水溶液、の各々で1日間処理を行ったマウス脳切片厚さ60μmの大脳皮質部分を用いて、波長200nm~1000nmの光の透過率を測定した。なお、光の波長帯200nm~1000nmは、2光子顕微鏡観察で常用する励起波長領域と、観察対象となる蛍光タンパク質の主たる蛍光波長の波長領域との双方をカバーする。なお、光の透過率測定は、マルチチャンネル検出PMA2浜松ホトニクス社を用いて行った。測定の結果は、図6に示す。同図に示すように、8M濃度の尿素水溶液、4M濃度の尿素水溶液、透明化試薬SCALE-A2、及び透明化試薬SCALE-D2は何れも光の透過率が80以上であり、水又はPBSを用いた処理とは異なり顕著な透明化処理の効果を奏した。実施例7:マウス胎仔の透明化処理Fucci-S-GreenFucci-S/G2/Mを発現するトランスジェニックマウス理化学研究所脳科学総合研究センター細胞機能探索技術開発チームが作製したマウスを自家繁殖し得たもの。参考文献SakaueSawanoetalCell132487982008の胎生13.5日目の胎仔を、4w/vPFAPBSで2日固定後に20w/vショ糖PBS溶液に浸漬し、一旦凍結後に解凍を行った。この後、再び4w/vPFAPBSで1時間固定を行った。その後、実施例2に記載のSCALE-A2に7日間浸漬することで透明化処理を行った。次いで、アガロースゲル濃度0.5w/v以下中に上記胎仔を封入し、蛍光実体顕微鏡商品名MZ10F:Leica社製で観察を行った。なお、観察に用いた対物レンズの作動距離は70mmであった。観察の結果は、図7に示す。同図に示すように、本実施例に係る生物材料用透明化試薬で透明化処理を行うことで、肝臓だけはやや黄色が残ったもののマウス胎仔の全身が顕著に透明になった。なお、同図中に示すmrMountingrubberは、マウス胎仔の頭部を支えるために用いたものである。実施例8:マウス海馬における神経幹細胞の観察灌流固定工程Fucci-S-GreenFucci-S/G2/Mを発現するトランスジェニックマウス理化学研究所脳科学総合研究センター細胞機能探索技術開発チームが作製したマウスを自家繁殖し得たもの。参考文献SakaueSawanoetalCell132487982008の生後6週齢のものを用い、ペリスタポンプを用いて左心室より氷冷PBSを灌流した後、氷冷固定液4パラホルムアルデヒド-PBSpH7.4を灌流してマウスの全身を完全に固定した。生物材料の摘出及び固定工程次いで、マウスの頭蓋骨を除去して、海馬の歯状回を注意深く摘出した。そして、摘出した海馬の歯状回を氷冷固定液4パラホルムアルデヒド-PBSpH7.4に一晩、4°Cの環境下で浸漬した。その後、この海馬の歯状回を、20シュークロース-PBS溶液中に移し24時間、4°Cの環境下で緩やかに振盪した。次いで、海馬の歯状回を20シュークロース-PBS溶液で完全に置換した後、OCTcompound中に包埋し、液体窒素を用いて凍結した。そして、凍結後の海馬の歯状回を、PBS中に移し室温で解凍した。解凍後の海馬の歯状回は、再び、4パラホルムアルデヒド-PBS中で1時間再固定した。なお、本実施例で用いた海馬の歯状回は、レクチン-テキサスレッドLectin-TexasRedコンジュゲートによりその血管が染色されている。生物材料の透明化処理及び観察工程最後に、再固定した海馬の歯状回を、本実施例に係る生物材料用透明化試薬に3日間、浸漬し、室温で振盪した。生物材料用透明化試薬は、4M濃度の尿素、0.1w/v濃度のTritonX-100、10w/v濃度のグリセロールを純水に溶解した水溶液である。透明化が進んだ時点処理開始から3日後で、アガロースゲル濃度0.5w/v以下の薄膜中に海馬の歯状回を封入し、920nmの波長のレーザーを備えた正立型2光子顕微鏡商品名FV1000MPE:Olympus社製で観察を行った。なお、観察に用いた対物レンズの作動距離workingdistanceは2mmであった。また、観察は、海馬腹側表面から1.7mmの深さまで18個の連続視野について行い、当該観察の結果を統合画像として再構成した。観察の結果は、図8に示す。図8に示すように、本実施例に係る生物材料用透明化試薬で透明化処理を行うことで、Fucci-S-GreenFucci-S/G2/M陽性の神経幹細胞が血管周囲に見られることが確認された。実施例9:神経幹細胞移植の観察蛍光タンパクVenusを発現させた大人のラット海馬由来の神経幹細胞を取得し、この神経幹細胞をラット系統FisherF344日本SLCより購入の大脳皮質部分に移植した。神経幹細胞の移植後、3日が経過したラット系統FisherF344を、上記実施例8の灌流固定工程に記載の方法に従い、固定をした。次いで、上記実施例8の生物材料の摘出及び固定工程に記載の方法に従い、ラット系統FisherF344の大脳皮質を固定した。なお、本実施例で用いたラットの大脳皮質は、レクチン-テキサスレッドLectin-TexasRedコンジュゲートによりその血管が染色されている。次いで、上記実施例8の生物材料の透明化処理及び観察工程に記載の方法に従い、大脳皮質の観察を行った。観察の結果は、図11に示す。同図に示すように、本実施例に係る生物材料透明化試薬で透明化処理を行うことで、蛍光タンパクVenusを発現した神経幹細胞が血管付近に集まっている様子が観察された。本方法は移植後の細胞の移動及び形態変化などを観察することにも適している。比較例1:BABB法との比較1神経系に蛍光タンパク質YFPを発現したトランスジェニックマウスYFP-Hline:米国Harvard大学JoshSanes教授より供与されたもの。参考文献FengetalNeuron2841512000の生後12週齢のものから大脳を摘出して、SCALE-A2試薬本発明:実施例2参照を用いた透明化処理と、非特許文献2に記載のDodtらによるベンジルベンゾエート/ベンジルアルコールbenzylbenzoatebenzylalchol法による透明化処理との比較を行った。なお、透明化処理は、何れも2日間、大脳を透明化処理液に浸漬することにより行った。また、上記BABB法で用いた透明化処理液の組成は、benzylalchol、およびbenzylbenzoate両者の組成比=1:2であった。結果を図9に示す。同図中で、Transmissionと示す列及びYFPと示す列の上段はSCALE-A2試薬による処理結果であり、下段はBABB法による処理である。なお、Transmissionは透過型顕微鏡による観察結果を、YFPは蛍光顕微鏡を用いたYFPからの蛍光を観察した結果を示す。図9に示すように、SCALE-A2試薬による透明化処理では、YFPが発する蛍光を明確に観察することが可能であった。一方、BABB法による透明化処理を行った大脳は著しく縮小し、かつYFPからの蛍光が著しく減弱した。比較例2:BABB法との比較2各種の蛍光タンパク質をコードする遺伝子をHeLa細胞東京大学医科学研究所より分与されたもの。SchereretalJExpMed976957101953に導入して対応する蛍光タンパク質を発現させた。ここで、発現させた蛍光タンパク質は、SECFP、EGFP、mAG1、Venus、及びDsRedであるEGFPおよびDsRedはClontech社より使用ライセンスを得て購入した。mAG1はMBL社より使用ライセンスを得て購入した。VenusおよびSECFPは理化学研究所脳科学総合研究センター細胞機能探索技術開発チームがGFPをもとに遺伝子的に変異を導入し作製した。参考文献SECFPHadjantonakisetalBMCBiotechnol2112002EGFPZhangetalBiochemBiophysResCommun2277077111996VenusNagaietalNatBotech2087902002mAG1KarasawaetalJBiolChem27834167341712003BairdetalPNAS9711984119892000。次いで、比較例1と同様にして、SCALE-A2試薬実施例2参照を用いた透明化処理と、非特許文献2に記載のDodtらによるベンジルベンゾエート/ベンジルアルコールbenzylbenzoatebenzylalchol法による透明化処理とを行い、両者を比較した。観察の結果は、図10に示す。同図では、透明化処理前の蛍光タンパク質由来の蛍光強度を100とした、各透明化処理後の蛍光タンパク質由来の蛍光強度の相対値を示している。図10より明らかな通り、SCALE-A2試薬本発明:実施例2参照による透明化処理では蛍光タンパク質由来の蛍光強度は何れの場合も80以上維持されたが、BABB法による透明化処理では蛍光タンパク質由来の蛍光強度は何れの場合も顕著に減弱させた。実施例10:透明化処理後の組織の回復GFPトランスジェニックマウスおよびYFPトランスジェニックマウスの海馬より25mm厚のスライスを作製し、一旦SCALE-A2試薬実施例2参照による透明化処理を5日間行って透明化した後、PBSで3回リンスして不透明状態の組織に戻した際の免疫染色性を、SCALE-A2試薬による透明化処理前のものと比較した。免疫染色には幼若な神経細胞の表面に存在するPSANCAMのポリシアル酸を認識するマウス由来抗PSANCAMpolysialilatedneuralcelladhesionmoleculeモノクローナル抗体と、アストログリアに特異的な中間径フィラメントGFAPglialfibrillaryacidicproteinを認識するウサギ由来抗GFAPポリクローナル抗体とを1次抗体として用い、24時間4°Cで反応させた後にPBSでリンスした。その後、抗PSANCAMモノクローナル抗体は、AlexaFluor546で標識された抗マウスIgM抗体InvitrogenMolecularProbes社を、GFAPポリクローナル抗体はAlexaFluor633で標識された抗ウサギIgG抗体を2次抗体InvitrogenMolecularProbes社として室温で3時間反応させることで免疫組織染色を行った。これらのスライスの蛍光はこの間減衰することはなかったため、GFPあるいはYFPの蛍光を含めた3重蛍光像が得られた。観察は倒立型共焦点レーザー顕微鏡を用いて20倍の対物レンズにより行った。図12に示すように、SCALE-A2の処理前図中でBeforeSCALE、処理後図中でAfterRecoveryともに、抗PSANCAMモノクローナル抗体によって、海馬歯状回に存在する幼若な神経細胞とその細胞からCA3領域へと伸長した苔状線維とが実質的な問題なく染色された。また同様に、抗GFAPポリクローナル抗体によって、アストログリアも問題なく染色された。本発明は上述した各実施形態及び実施例に限定されるものではなく、請求項に示した範囲で種々の変更が可能であり、異なる実施形態にそれぞれ開示された技術的手段を適宜組み合わせて得られる実施形態についても本発明の技術的範囲に含まれる。