"グァーガム分解物を含有することを特徴とするSOAT発現抑制剤。SoatmRNA発現抑制を特徴とする請求項1記載のSOAT発現抑制剤。グァーガム分解物の平均分子量が、5×102~1.8×105である請求項1又は2記載のSOAT発現抑制剤。請求項1~3いずれか記載のSOAT発現抑制剤とスタチンとの併用剤。本発明は、これまで全く知られていなかったSOATの発現抑制剤、もしくはSoat遺伝子のmRNAの発現抑制剤を提供することを目的とするものである。本発明者らは上記課題を解決するために鋭意努力した結果、ガラクトマンナン多糖を主成分とするグァーガム分解物を経口摂取することにより、Soat遺伝子のmRNAの発現が抑制され、そのことによりSOATが減少することを見出し、本発明の完成に至った。すなわち、本発明はSOATの発現抑制剤、もしくはSoat遺伝子のmRNAの発現抑制剤である。本発明の発現抑制剤は単独で用いることもできるが、血中コレステロールの抑制という点よりスタチンとの併用が好ましい。本発明のSOAT抑制剤は、Soat遺伝子のmRNAを発現抑制できるという利点がある。本発明のSOAT抑制剤を用いることにより血中コレステロール値の低減が可能となる。以下、本発明を詳細に説明する。本願発明におけるグァーガム分解物は、水溶性の食物繊維で、インドパキスタン等で食用にされている一年生豆科植物グァー学名Cyamopsistetragonoloba由来の豆を原料とし、その胚乳に含まれるガラクトマンナン多糖を加水分解し低分子化することにより得られるものである。加水分解の方法としては、酵素分解法、酸分解法など、特に限定するものではないが、分解物の分子量が揃い易い点から酵素分解法が好ましい。酵素分解法に用いられる酵素は、マンノース直鎖を加水分解する酵素であれば市販のものでも天然由来のものでも特に限定されるものではないが、アスペルギルス属菌やリゾップス属菌などに由来するβ-マンナナーゼが好ましい。また、グァーガム分解物の平均分子量分布は、上限値が1.8×105以下であり、好ましくは、1.0×105以下、さらに好ましくは、2.5×104以下である。グァーガム分解物の平均分子量分布の下限値は5×102以上であり、好ましくは、3.0×103以上、さらに好ましくは、1.0×104以上である。平均分子量分布が5×102以下では本願発明のSOAT抑制剤を供することが不可能となり、平均分子量が1.8×105を超えると、粘度が高く飲食品に含有させる場合に不都合が生じる。平均分子量分布の測定方法は、特に限定するものではないが、例えばポリエチレングリコール平均分子量:2×102、2×103、2×104及び1×105をマーカーに高速液体クロマトグラフ法カラム:YMC-PackDiol-120ワイエムシイ社製、検出器:示差屈折計を用いて、平均分子量分布を測定する方法等を用いることにより求めることができる。本願発明のグァーガム分解物は、特に限定するものではないが、上記平均分子量分布のものが70以上、好ましくは80以上含まれるものが用いられる。市販品としては、サンファイバー太陽化学社製、ファイバロン大日本住友製薬社製、グアファイバー明治フードマテリアル社製などが挙げられる。以下、調製例及び実施例を挙げて本発明を具体的に説明するが、本発明はこれらに限定するものではない。調製例1-1水900gに0.1N塩酸を加えてpH4.5に調整し、これにアスペルギルス属細菌由来のβ-マンナナーゼノボノルディスクバイオインダストリー社製0.2gとグァーガム粉末太陽化学株式会社製100gを添加、混合し、40~45°Cで24時間に渡り、グァーガムの酵素分解を行った。反応後、90°Cで15分間加熱して酵素を失活させた。濾過分離吸引濾過して、不溶物を除去して得られた透明な溶液を減圧濃縮Yamato製エバポレーターした後固形分量:20重量、噴霧乾燥装置大川原化工機株製により乾燥し、グァーガム分解物を粉末として65g得た。グァーガム分解物を水に溶解させて得た、グァーガム分解物量換算で0.5w/v濃度の水溶液をポリエチレングリコール平均分子量:2×102、2×103、2×104及び1×105を分子量マーカーとする高速液体クロマトグラフィー株ワイエムシイ製カラム:YMC-PackDiol-120に供して平均分子量を求めたところ約20,000であった。調製例1-2水900gに0.1N塩酸を加えてpH3に調整し、これにアスペルギルス属細菌由来のβ-マンナナーゼノボノルディスクバイオインダストリー社製0.15gとグァーガム粉末太陽化学株式会社製100gを添加、混合し、40~45°Cで24時間に渡り、グァーガムの酵素分解を行った。反応後、90°Cで15分間加熱して酵素を失活させた。濾過分離吸引濾過して、不溶物を除去して得られた透明な溶液を減圧濃縮Yamato製エバポレーターした後固形分量:20重量、噴霧乾燥装置大川原化工機株製により乾燥し、グァーガム分解物を粉末として68g得た。得られたグァーガム分解物について、調製例1-1と同様にして平均分子量を求めたところ約25,000であった。調製例1-3水900gに0.1N塩酸を加えてpH4に調整し、これにアスペルギルス属細菌由来のβ-マンナナーゼノボノルディスクバイオインダストリー社製0.25gとグァーガム粉末太陽化学株式会社製100gを添加、混合し、50~55°Cで12時間に渡り、グァーガムの酵素分解を行った。反応後、90°Cで15分間加熱して酵素を失活させた。濾過分離吸引濾過して、不溶物を除去して得られた透明な溶液を減圧濃縮Yamato製エバポレーターした後固形分量:20重量、噴霧乾燥装置大川原化工機株製により乾燥し、グァーガム分解物を粉末として70g得た。得られたグァーガム分解物について、調製例1-1と同様にして平均分子量を求めたところ約15,000であった。調製例1-4前記特開平5-117156号公報の実施例第4頁第3行~第4頁第10行の記載に従ってグァーガム分解物の調製を行った。調製例1-1に準じて平均分子量を求めたところ5,500であった。当該加水分解物中、グァーガム分解物は91重量含まれており、タンパク質が0.1重量含まれていた。調製例1-5調製例1-4で分子量測定のために高速液体クロマトグラフィーを行った際に、低分子量のピークを分取した。再度、高速液体クロマトグラフィーを行い、平均分子量を求めたところ約800であった。実施例1実験動物は、BKS.Cg-Dock7m/Leprdb/Jマウス4週齢、オスを、1週間、AIN-93G標準飼料で予備飼育して、異常のない個体を選別し、対照群以下、a群およびグァーガム分解物群b群およびc群の計3群1群3匹に分け、実験に供した。予備飼育が終了した日から試験終了日摂取期間28日間まで、a群にはAIN-93G標準飼料組成は表1を参照を、b群にはAIN-93G標準飼料中のセルロースパウダー5の内、2.5を調製例1-1~1-5で調製したグァーガム分解物に置換した実験飼料を、c群にはAIN-93G標準飼料中のセルロースパウダー5を調製例1-1~1-5で調製したグァーガム分解物に置換した実験飼料を自由摂取させた。飼料の組成については表1に示した。表1におけるは、全て重量を表す。摂取期間終了後、麻酔下にてマウスを解剖し、小腸を摘出した。小腸を洗浄後、3等分し、最も盲腸に近い部位をハサミで切り開いた。スライドグラスを用いて腸の粘膜組織を削りとった。Isogenニッポンジーン製を用い、全RNAを粘膜組織から抽出して、その一部をRNeasyMiniKitQIAGENで精製し、250ngをサンプル調整して、AffymetrixMouseGene1.0STArrayアフィメトリクス社にハイブリダイゼーション、およびスキャンを行った。スキャンしたデータを、PartekGenomicsSuitePartek社にインポートし、Array間補正RMA法使用後、指定された組み合わせにて比較解析、有意差検定ANOVAを行った。a群に対してb群、a群に対してc群の各遺伝子の発現量を比較して、発現量がa群の方がともに1.1倍以上高い遺伝子を抽出した。その結果、グァーガム分解物を摂取して発現量が減少する遺伝子として、Soat1が確認された。Soat1の発現量は特に調製例1-1で示したグァーガム分解物では、a群に対してb群、a群に対してc群の遺伝子の発現量がともに1.5倍以上減少しており、最も強い効果が確認された。調製例1-2と調製例1-3で示したグァーガム分解物では、a群に対してc群の遺伝子の発現量が1.5倍以上減少し、調製例1-1で示したグァーガム分解物に次いで強い効果を示した表2。実施例2グァーガム分解物は調製例1-1で示したものを用い、実施例1と同様の方法で、マウスを飼育した。ただし、予備飼育終了後から摂取期間終了後まで毎日200mg/kgのプラバスタチンを経口投与した。摂取期間終了後、麻酔下でヘパリンを通した注射針を用いて採血を行った。遠心3,000rpm、10分後、上清を回収し、血漿とした。血漿中の総コレステロール値を分析した結果、グァーガム分解物を摂取することにより、血漿中の総コレステロール値は減少し、プラバスタチンを併用することにより、さらに減少することが確認された表3。"