常用化した培養培地の構成成分の種類を分析後、2種類以上の培養培地を組合せ、多種類の候補基本培養培地組成を準備する段階と、候補基本培養培地組成を対象に、10~20のウシ胎児血清が含まれた完全培地で間葉系幹細胞の増殖率を分析し、間葉系幹細胞の早期培養に適した基本培養培地組成をスクリーンする段階を含む間葉系幹細胞の基本培養培地の調製方法。常用化した培養培地であるDEME高グルコース、RPMI1640及びHam’sF12を11の割合で混合した基本培地と、DMEM高グルコース、RPMI1640及びHam’sF12の各培地を比較するが、DMEM高グルコース培地成分を基本成分とし、各培地で重複する成分は、高濃度を選択、DMEM高グルコース培地に含まれない成分は、DMEM高グルコース培地に含み、各培地の一つの培地にだけ入っている成分の濃度はそのまま維持、DMEM高グルコース培地に含まれない成分は、DMEM高グルコース培地に含み、各培地の成分の中、同一供給源である成分は、一つの成分を選択し、選択した一つの成分が各培地に重複する成分であれば、高濃度を選択、DMEM高グルコース培地に含まれない成分は、DMEM高グルコース培地に含み、ABMM培地が調製されていることを特徴とする間葉系幹細胞の基本培養培地。請求項2において、DMEM高グルコースに含まれる成分は、アミノ酸では、Lアラニン、Lアスパラギン無水物、Lアスパラギン酸、Lグルタミン酸、LヒドロキシLプロリン、Lプロリンであり、無機塩では、硫酸銅5水和物、硫酸鉄7水和物、リン酸水素二ナトリウム無水物、硫酸亜鉛7水和物、ビタミンでは、Dビオチン、Pアミノ安息香酸、ビタミンB12、その他の成分では、ハイポキサンチン、還元型Lグルタチオン、リノール酸、プトレシン2HCL、チオクト酸、チミジンであることを特徴とする間葉系幹細胞の基本培養培地。請求項2において、ABMM培地には、胎児、子牛、馬、または、人間の血清、、抗生剤及び抗真菌剤の中から更に一つ以上を含む間葉系幹細胞の基本培養培地。請求項2において、ABMM培地には、1020のウシ胎児血清と24mMのLグルタミンを更に含む間葉系幹細胞の基本培養培地。請求項2において、同一供給源である成分から選択される一つの成分は、アミノ酸では、Lアルギニンモノヒドロクロライド、Lアスパラギン酸、Lシスチンジヒドロキシクロライド、Lヒスチジンモノヒドロクロライドであり、無機塩では、塩化カルシウム二水和物、硫酸鉄7水和物、硫酸マグネシウム無水物、リン酸二水素ナトリウム無水物、ビタミンでは、ピリドキサル塩酸塩であることを特徴とする間葉系幹細胞の基本培養培地。請求項2において、ABMM培地は、CD166、CD105、CD90、CD44、CD29、CD73、HLAABC陽性表面マーカーを80以上発現するが、CD44、CD105、CD90、CD73とCD166陽性表面マーカーは、95以上発現、CD14、CD31、CD34、CD45、CD80とHLADR陰性表面マーカーを5以下発現することを特徴とする間葉系幹細胞の基本培養培地。請求項2のABMM培地で、間葉系幹細胞が培養された後に、ウシ胎児血清、デキサメタゾン、βグリセロリン酸、アスコルビン酸を含む培地で、再度培養分化され、骨形成細胞に分化することを特徴とする骨欠損用細胞治療剤。請求項2のABMM培地で、間葉系幹細胞が培養された後に、デキサメタゾン、アスコルビン酸とピルビン酸ナトリウム、TGF、BMP2を含むCMEM低グルコース培地で、再度培養分され、軟骨細胞に分化することを特徴とする骨関節炎細胞治療剤。請求項2のABMM培地で、間葉系幹細胞が培養された後に、ウシ胎児血清、デキサメタゾン、インドメタシン、インスリンを含む培地で、再度培養分化され、脂肪細胞に分化することを特徴とする脂肪組織形成用細胞治療剤。従って、本発明の目的は、人間の骨髄及び脂肪組織など、成体組織から由来した未分化状態の間葉系幹細胞を急速な成長速度で大量増殖培養可能な間葉系幹細胞の基本培養培地を提供することにある。本発明の別の目的は、間葉系幹細胞の基本培養培地を用いて、体外で成体組織から由来した未分化状態の間葉系幹細胞を骨形成細胞、軟骨細胞及び脂肪細胞に分化させ、未分化した間葉系幹細胞を含む細胞治療剤を提供することにある。上述した本発明の目的は、常用化した培養培地の構成成分の種類を分析後、2種類以上の培養培地を組合わせて、多種類の候補基本培養培地組成を準備する段階と、候補基本培養培地組成を対象に、10~20のウシ胎児血清が含まれた完全培地から間葉系幹細胞の増殖率を分析し、間葉系幹細胞の早期培養に適した基本培養培地組成をスクリーンする段階を含む間葉系幹細胞の基本培養培地の調製方法により達成される。また、本発明の目的は、常用化した培養培地であるDMEMハイグルコース、RPMI1640及びHam’sF12を1:1の割合で混合した培地とDMEMハイグルコース、RPMI1640及びHam’sF12の各培地を比較するが、DMEMハイグルコース培地成分を基本成分とし、各培地の中で重複する成分は高濃度を選択、DMEMハイグルコース培地に含まれない成分は、DMEMハイグルコース培地に含め、各培地の一つの培地にだけ入っている成分の濃度はそのまま維持、DMEMハイグルコース培地に含まれない成分はDMEMハイグルコースに含め、各培地の成分の中、同一供給源である成分は、一つの成分を選択し、選択した一つの成分が各培地に重複する成分であれば高濃度を選択、DMEMハイグルコース培地に含まれない成分は、DMEMハイグルコース培地に含めて、ABMM培地を調製した間葉系幹細胞の基本培養培地により達成される。本発明の間葉系幹細胞の基本培養培地において、DMEMハイグルコース培地に含まれる成分は、アミノ酸では、Lアラニン、Lアスパラギン無水物、Lアスパラギン酸、Lグルタミン酸、LヒドロキシLプロリン、Lプロリンであり、無機塩では、硫酸銅5水和物、硫酸鉄7水和物、リン酸水素二ナトリウム無水物、硫酸亜鉛7水和物、ビタミンでは、Dビオチン、Pアミノ安息香酸、ビタミンB12、その他の成分では、ハイポキサンチン、還元型Lグルタチオン、リノール酸、プトレシン2HCL、チオクト酸、チミジンであることを特徴とする。本発明の間葉系幹細胞の基本培養培地において、ABMM培地には胎児、子牛、馬、または、人間の血清、Lグルタミン、抗生剤及び抗真菌剤の中から一つ以上が含まれる。本発明の間葉系幹細胞の基本培養培地において、ABMM培地には、1020のウシ胎児血清と2mMのLグルタミンが余計に含まれる。本発明の間葉系幹細胞の基本培養培地において、同一供給源の成分から選択される一つの成分は、アミノ酸では、Lアルギニンモノヒドロクロライド、Lアスパラギン酸、Lシスチンジヒドロキシクロライド、Lヒスチジンモノヒドロクロライドであり、無機塩では、塩化カルシウム二水和物、硫酸鉄7水和物、硫酸マグネシウム無水物、リン酸二水素ナトリウム無水物、ビタミンでは、ピリドキサル塩酸塩であることを特徴とする。本発明の間葉系幹細胞の基本培養培地において、ABMM培地は、CD166、CD105、CD90、CD44、CD29、CD73、HLAABC陽性表面マーカーを80以上発現するが、CD44、CD105、CD90、CD73とCD166陽性表面マーカーは95以上発現、CD14、CD31、CD34、CD45、CD80とHLADR陰性表面マーカーを5以下発現することを特徴とする。また、本発明の目的は、ABMM培地で間葉系幹細胞が培養された後、ウシ胎児血清、デキサメタゾン、ベータグリセロリン酸、アスコルビン酸を含むα-MEM培地で再び培養分化され、骨形成細胞に分化することを特徴とする骨欠損治療用細胞治療剤により達成する。また、本発明の目的は、ABMM培地で間葉系幹細胞が培養された後、デキサメタゾン、アスコルビン酸とピルビン酸ナトリウム、TGFβ、BMP2を含むDMEM低グルコース培地で再び培養分化され、軟骨細胞に分化することを特徴とする骨関節炎治療用細胞治療剤により達成する。また、本発明の目的は、ABMM培地で間葉系幹細胞が培養された後、ウシ胎児血清、デキサメタゾン、インドメタシン、インシュリンを含むα-MEM培地で再び培養分化され、脂肪細胞に分化することを特徴とする脂肪組織形成用細胞治療剤により達成する。上述した本発明の間葉系幹細胞の基本培養培地により、人間成体幹細胞である未分化した間葉系幹細胞の大量増殖培養が急速な成長速度で可能であり、1ヶ月以上の長期培養増殖でも細胞の核型を維持し、骨形成細胞、軟骨細胞及び脂肪細胞の誘導体に分化させ、細胞治療剤として使用できる。本発明は、骨髄及び脂肪などの成体組織から由来した間葉系幹細胞の基本培養培地を提供するが、本発明の間葉系幹細胞の基本培養培地は、常用化した培地構成成分の種類を分析した後、2種類以上の培地を組合わせて、多種類の候補基本培養培地組成を準備する段階と、候補基本培養培地組成を対象に、10~20のウシ胎児血清を含む完全培地から間葉系幹細胞の増殖率を分析し、間葉系幹細胞に適した基本培養培地組成をスクリーンする段階を含み調製される。このように調製した、本発明の間葉系幹細胞の基本培養培地を利用して、急速な成長速度で早期培養した間葉系幹細胞が免疫学的細胞特性を示すかを分析、骨形成細胞、軟骨細胞及び脂肪細胞への分化のために分化能を分析、染色体異常による突然変異が発生せず、長期間の培養が可能であるかの確認のための細胞核型を分析し、骨欠損治療用、骨関節炎治療用及び脂肪組織形成を通じた脂肪細胞治療用細胞治療剤に使用できるかの有無を検証することになる。ここで、本発明の間葉系幹細胞の基本培養培地を利用して、細胞治療剤として使用できるかの有無を検証するためには、免疫学的細胞特性、分化能及び細胞核型の分析が必要であるが、次のような手順に沿った実験を通じての検証が望ましい。先ず、スクリーンされた培地組成で培養した間葉系幹細胞の免疫学的細胞特性を分析する段階とスクリーンされた培地組成で培養した間葉系幹細胞の分化能を分析する段階及びスクリーンされた培地組成で培養した間葉系幹細胞の長期間培養可能の有無を確認するための細胞核型を分析する段階で検証することである。以下、本発明に対して具体的に説明することとする。本発明の間葉系幹細胞の基本培養培地であるABMM培地は、常用化した培養培地であるDMEMハイグルコース、RPMI1640及びHam’sF12を111の割合で混合した基本培地を準備、DMEMハイグルコース培地成分を基本成分とし、上記基本培地をDMEMハイグルコース、RPMI1640及びHam’sF12の各培地と比較して、各培地の中で重複する成分は高濃度を選択、DMEMハイグルコース培地に含まれない成分は、DMEMハイグルコース培地に含み、各培地の一つの培地にだけ入っている成分の濃度はそのまま維持、DMEMハイグルコースに含まれない成分は、DMEMハイグルコース培地に含み、各培地の成分中、同一供給源である成分は、一つの成分を選択し、選択した一つの成分が各培地の重複する成分であれば、高濃度を選択、DMEMハイグルコース培地に含まれない成分は、DMEMハイグルコース培地に含み、下記の表1のように調製される。常用化した培地の組成及びABMM培地の組成上記表1の備考欄に開示された通り、本発明のABMM培地の基本成分であるDMEMハイグルコース培地にない成分で追加され含まれる成分は、アミノ酸では、Lアラニン、Lアスパラギン酸無水物、Lアスパラギン酸、Lグルタミン酸、LヒドロキシLプロリン、Lプロリンであり、無機塩では、硫酸銅5水和物、硫酸鉄7水和物、リン酸二水素ナトリウム無水物、硫酸亜鉛7水和物、ビタミンでは、Dビオチン、Pアミノ安息香酸、ビタミンB12、その他の成分では、ハイポキサンチン、還元型Lグルタチオン、リノール酸、プトレシン2HCL、チオクト酸、チミジンである。上述した本発明の間葉系幹細胞の基本培養培地であるABMM培地を調製した表1の備考欄に対する説明は、次の通りである。各培地の中で重複する成分は、高濃度を選択するが、DMEMハイグルコース培地に含まれない成分で、DMEMハイグルコース培地に含まれるものは、表1の備考欄1に該当する。これは、従来、特許文献9のDMEM、PRMI1640で構成されたABMCの培地に、本発明の成体幹細胞から由来した間葉系幹細胞を培養した結果、細胞の形態異常及び付着性の喪失が誘発したため、これの補強のために、増殖率及び細胞の合成と関連する成分を補強した。アミノ酸であるグリシン、Lグルタミン、Lイソロイシン、Lロイシン、Lリジン、Lメチオニb、Lフェニルアラニン、Lセリン、Lトレオニン、Lトリプトファン、Lチロシン、Lバリンは、タンパク質合成の主要アミノ酸として、高い方の濃度を選択することで、タンパク質合成の増進と同時に細胞の増殖を高めた。無機質塩である塩化カリウム、塩化ナトリウムは、細胞内外の浸透圧と関連するため、適正浸透圧の維持のために高い方の成分を選択した。ビタミン類であるアスコルビン酸リン酸、塩化コリン、Dビオチン培地に含む、Dパントテン酸カルシウム、葉酸、ミオイノシトール、ニコチンアミド、リボフラビン、塩酸チアミン水和物、ビタミンB12培地に含むは、抗酸化剤として、細胞の高増殖により生成された老廃物を取除くために高濃度を選択した。その他の成分であるDグルコース無水物は、主要エネルギー源として、高増殖の維持のためのエネルギー源として高濃度を選択、ピルビン酸ナトリウムは、細胞内合成に関して高い方を選択した。PhenolRedSodiumSaltは、細胞の増殖とは関連しないが、細胞の活発な増殖により排出された老廃物で、PhenolRedの色が赤色から黄色に変化するため、高増殖率により排出された老廃物の量を視覚的に測定するために高濃度を選択した。プロリンは、コラーゲンの主成分として、細胞外基質合成の主要成分である。高増殖の間葉系幹細胞内コラーゲン合成を増加させるのために、DMEMハイグルコース培地に含ませた。アスパラギン酸は、ほぼ全てのタンパク質に含まれており、クエン酸回路に連結された、プリン塩基とピリミジン塩基のアミノ基供給体である。従って、高増殖率を示す細胞のDNA合成の主要供給源は、プリンとピリミジン塩基を主要供給体とし、DMEMハイグルコース培地に含ませた。Lグルタミン酸は、細胞内の新陳代謝の重要なアミノ酸として、細胞の活発な増殖のために、DMEMハイグルコース培地に含ませた。各培地の一つの培地にだけ入っている成分の濃度はそのまま維持し、DMEMハイグルコースに含まれない成分で、DMEMハイグルコース培地に含まれるものは、表1の備考欄2に該当する。DMEM及びRPMI1640で構成され増殖率を高めたABMC培地での間葉系幹細胞の場合、細胞付着性が喪失された。これの補強のために、細胞内のコラーゲン合成を高め、高まった合成により誘発した老廃物を取除くために、DMEMハイグルコース培地にない成分を含ませた。アミノ酸であるLアラニンは、細胞の免疫と合成に関与するアミノ酸として、間葉系幹細胞の増殖を高めるために含ませ、アミノ酸であるLヒドロキシLプロリン、その他の成分であるチオクト酸とリノール酸、ビタミン類であるPアミノ安息香酸は、細胞内のコラーゲン構成成分として、細胞内のコラーゲン合成と細胞の付着性を高めるために、DMEMハイグルコース培地に含ませた。無機質塩である硫酸銅5水和物と硫酸亜鉛7水和物、その他の成分である還元型グルタチオンは、抗酸化剤として、高増殖率を示す細胞内の多様な老廃物の排出を更に増進させ、高い細胞増殖率を示すために、EMEハイグルコース培地に含ませた。その他の成分であるチミジン、プトレシン2HCL、ヒポキサンチンは、DNA合成に関与する成分として、細胞増殖を高めるためには、DNA合成を先行する必要があるため、DMEMハイグルコース培地に含ませた。各培地の成分の中、同一供給源である成分は、一つの成分を選択し、選択した一つの成分が各培地に重複する成分であれば高濃度を選択、DMEMハイグルコース培地に含まれない成分で、DMEMハイグルコース培地に含まれるのは、表1の備考欄3に該当する。アミノ酸であるLアルギニン、Lアスパラギン、Lシステインシスチン、Lヒスチジン、無機質塩であるカルシウム塩化物硝酸塩、三硝酸鉄硫酸第一鉄、リン酸ナトリウム、ビタミン類であるピリドキサール塩酸塩ピリドキシン塩酸塩の場合、同一供給源成分が2つ以上追加されると、培地内の浸透圧が高まり細胞に悪影響を及ぼし得るので、同一成分は、高濃度成分に限り、一つの供給源だけを選択した。また、培地製造の際に生成し得る塩の最小化のために、無機塩から水和物が少量付いている成分を選択した。リン酸ナトリウムは、例外的に高濃度を選択すると、培地全体の浸透圧が上昇し、細胞に悪影響を及ぼし得るので、適正浸透圧の維持のために14204mgLを選択した。塩化マグネシウム6水和物と硫酸マグネシウム無水物は、細胞内代謝の主要物質であるマグネシウムの供給源として、培地製造の際、塩の生成を減らすために無水化の硫酸マグネシウム無水物を選択するが、重複する成分であるため、高濃度を選択した。上記のような理由により、表1に開示された通り、アミノ酸成分の場合、LArginineFreeBaseとLArginineMonobydrochlorideの中では、LArginineMonobydrochlorideを選択、LAsparagineMonobydrateとLAsparaticacidでは、LAsparaticacidを選択、LCysteineMonobydrochlorideMonobydrateとLCystineDibydrochlorideでは、LCystineDibydrochlorideを選択、LHistidimeとLHistidineMonobydrochlorideMonobydrateでは、LHistidineMonobydrochlorideMonobydrateを選択するのである。無機塩成分の場合、CalciumChlorideDihydrateとCalciumNitrateTetrahydrateの中では、CalciumChlorideDihydrateを選択、FerricNitrateNonabydrateとFerrousSulfateHeptabydrateでは、FerrousSulfateHeptabydrateを選択、MagnesiumChlorideHexabydrateとMagnesiumSulfateAnbydrousでは、MagnesiumSulfateAnbydrousを選択、SodiumPhosphateDibasicAnhydrousとSodiumPhosphateMonobasicAnhydrousでは、SodiumPhosphateDibasicAnhydrousを選択するのである。ビタミン成分の場合、PyridoxalHydrochlorideとPyridoxineHydrochlorideの中、PyridoxalHydrochlorideを選択するのである。上述の通り、骨髄及び脂肪などの成体組織から由来する間葉系幹細胞を体外で培養するための間葉系幹細胞の基本培養培地組成は、DMEMハイグルコース、RPMI1640及びHam’sF12倍地の組成から出発するが、DMEMハイグルコースの成分を基本成分として調製される。即ち、本発明のABMM培地、間葉系幹細胞は、細胞の増殖及び合成が不活発な成体幹細胞に分類され、アミノ酸濃度が高いDMEMハイグルコース培地の成分を基本成分とし、DMEMハイグルコース培地には無いか、或いは、濃度が低いアミノ酸、無機塩、ビタミンなどの構成成分の濃度を調整した培地である。間葉系幹細胞は、人間を含めた哺乳動物の成体組織から由来したmultipotencyを有する未分化細胞を指し、成体組織は、骨髄、血液、脳、皮膚、脂肪、臍帯血などが含まれる。上記骨髄、または、脂肪組織などの成体組織から間葉系幹細胞を様々な方法を通じて分離できる。例えば、パーコールなど、密度勾配遠心分離による分離方法の利用、或いは、コラゲナーゼなどの酵素処理で分離した細胞をLuriaなどの方法で、培養容器の底に付着して育つ全細胞を分離する方法などで、容易に分離できる。本発明の間葉系幹細胞の基本培養培地は、成体組織である骨髄、血液、脳、皮膚、脂肪、臍帯血などから分離された間葉系幹細胞を培養するためのもので、必要に応じて、一つ以上の成分を添加可能であるが、胎児子牛、馬、または、人間の血清及びLグルタミンを始め、微生物の汚染防止のための抗生剤及び抗真菌剤を添加して使用でき、好ましくは、1020のウシ胎児血清と24mMのLグルタミンを添加することが望ましい。間葉系幹細胞の基本培養培地を通じた増殖率の確認のために、間葉系幹細胞は、本発明の基本培養培地で培養する。このように培養された間葉系幹細胞の免疫学的細胞特性を探って見ると、CD166、CD105、CD90、CD44、CD29、CD73、HLAABC陽性表面マーカーは、80以上発現し、ここで特に、CD44、CD105、CD90、CD73とCD166陽性表面マーカーは、95以上発現、CD31、CD34、CD45、CD80とHLADR陰性表面マーカーは、5以下発現する免疫学的細胞特性を示す。また、プラスティック培養容器に付着して増殖する螺旋状の形態学的特性を示し、二分化状態で増殖して分化能力を持つ特徴を示す。また、上記培養された間葉系幹細胞は、骨形成細胞、軟骨細胞及び脂肪細胞として分化可能な多分化能の間葉系幹細胞であることを確認できた。本発明はまた、間葉系幹細胞がABMM培地で培養された後、ウシ胎児血清、デキサメタゾン、βベータグリセロリン酸、アスコルビン酸を含むαMEM培地で再び培養され、骨形成細胞に分化し得る間葉系幹細胞を含む骨欠損治療用細胞治療剤を提供する。本発明または、間葉系幹細胞がABMM培地で培養された後、デキサメタゾン、アスコルビン酸、ピルビン酸ナトリウム、TGFβ、BMP2を含むDMEM低グルコース培地で再び培養され、軟骨細胞に分化し得る間葉系幹細胞を含む骨関節炎治療用細胞治療剤を提供する。本発明はまた、間葉系幹細胞がABMM培地で培養された後、ウシ胎児血清、デキサメタゾン、インドメタシン、インシュリンを含むαMEM培地で再び培養され、脂肪細胞に分化し得る間葉系幹細胞を含む脂肪組織形成用細胞治療剤を提供する。以下、本発明の間葉系幹細胞の基本培養培地での間葉系幹細胞の増殖率を別の培地と比較、ABMM培地で培養された間葉系幹細胞の免疫学的細胞特性を確認、ABMM培地で培養された間葉系幹細胞の分化能確認及びABMM培地で培養された間葉系幹細胞の細胞核型維持に対して、下記の実施例を通じて、より詳細な説明を行なう。本発明の間葉系幹細胞の基本培養培地増殖力の比較ABMM培地内で骨髄及び脂肪組織など、成体組織から由来した間葉系幹細胞に対する増殖力を分析するために、凍結保管された骨髄由来の間葉系幹細胞と脂肪由来の間葉系幹細胞をロンザ社から購入し、骨髄由来の間葉系幹細胞は、PoieticsMSCGMTMBullekitで培養、脂肪由来の間葉系幹細胞は、PoieticsADSCGMTMBullekitにて、培養社の専用培地と比較した。11.骨髄及び脂肪組織由来の間葉系幹細胞の準備ロンザ社から購入した骨髄由来の間葉系幹細胞を37°Cの水浴で迅速に解凍した後、5mLのMSCGMTM培地を有する15mLチューブに入れて、300gで5分間遠心分離した。遠心分離後、上層液培地を除去、新しいMSCGM培地10mLで縣濁し、細胞数及び細胞生存率を測定した。準備した細胞は、T25フラスコで当り5000個の細胞を接種し、37°Cと5CO2を維持しながら培養した。34日毎、培養容器別にMSCGM培地5mLで培養液の交換を行ないながら培養、細胞がフラスコ床面積の90以上成長すると継代培養を実施した。2次、3次及び4次培養を行い、試験用細胞数を準備した。ロンザ社から購入した脂肪組織由来の間葉系幹細胞を37°Cの水浴で迅速に解凍した後、5mLADSCGM培地を有する15mLチューブに入れて、300gで5分間遠心分離した。遠心分離後、上層液培地を除去、新しいADSCGM培地10mLで縣濁し、細胞数及び細胞生存率を測定した。準備した細胞は、T25フラスコで当り5000個の細胞を接種し、37°Cと5CO2を維持しながら培養した。34日毎、培養容器別に10のウシ胎児血清を含むADSCGM培地5mLで培養液の交換を行ないながら培養、細胞がフラスコ床面積の90以上成長すると継代培養を実施した。2次、3次及び4次継代培養を行い、試験用細胞数を準備した。12.ABMM培地での骨髄由来の間葉系幹細胞の増殖比較MSCGM培地で4次まで継代培養された骨髄由来の間葉系幹細胞をMSCGM培地を対照群とし、本発明のABMM培地での増殖力を調査した。MSCGM培地は、MSCBMである基本培地と添加剤で構成されているため、ABMM培地でも添加剤を添加して比較試験を実施した。本発明のABMM培地とMSCGM倍地との増殖力培地組成4次継代培養後、表2の培地組成が入っているT75フラスコにァイ当り5000個の細胞を接種し、37°Cと5CO2を維持しながら培養した。34日毎、培養容器別に其々の培地で培養液の交換を行ないながら10日間培養した後、細胞数を測定した。図1と図3を通じて探って見ると、対照群の場合、MSCBMに10のウシ胎児血清を添加した培地は、10日間増殖せず、添加剤を添加したMSCBMであるMSCGM培地もまた、増殖が行なわれなかった。しかし、試験群である本発明のABMM培地に、10のウシ胎児血清を添加した培地は、MSCGMより高い増殖を示し、倍加時間も速かった。ABMMに添加剤を含めた培地もまた、MSCGMより高い増殖と速い倍加時間を示したため、ABMM培地組成が骨髄由来の間葉系幹細胞の増殖率を高めたことを確認した。MSCGM培地では、骨髄由来の間葉系幹細胞の増殖が行なわれない反面、10のウシ胎児血清と2mMLグルタミンを含むABMM培地で、骨髄由来の間葉系幹細胞は増殖された。これは、MSCGM培地で培養した間葉系幹細胞の増殖能は喪失したが、ABMM培地では増殖能を維持することを示している。ABMM培地での増殖能持続の確認のために、5次継代培養で回収した細胞をT150フラスコでァイ当り5000個の細胞を接種し、37°Cと5CO2を維持しながら培養した。34日毎、培養容器別に10のウシ胎児血清、2mMLグルタミンを含むABMM培地で培養液の交換を行ないながら10日間培養した後、細胞数を測定した結果、3357500の細胞を回収、接種細胞数750000対比447の増殖率を示し、増殖能の持続を確認した。従って、本発明のABMM培地は、骨髄由来の間葉系幹細胞の増殖能に優れることを確認できた。各培養培地別、骨髄由来の間葉系幹細胞の増殖分析結果13.ABMM培地での脂肪由来の間葉系幹細胞の増殖比較ADSCGM培地で4次まで継代培養した脂肪由来の間葉系幹細胞をADSCGM培地を対照群とし、ABMM培地での増殖力を調査した。ADSCGM培地は、ADSCCBMである基本培地と添加剤で構成されるため、本発明のABMM培地に10のウシ胎児血清と2mMLグルタミンを添加して比較試験を実施した。4次継代培養後、其々の培地が入っているT75フラスコにァイ当り5000個の細胞を接種し、37°Cと5CO2を維持しながら培養した。34日毎、培養容器別に其々の培地で培養液の交換を行ないながら7日間培養した後、細胞数を測定した。また、回収した細胞を継代培養して、培地が入っているT175フラスコにァイ当り5000個の細胞を接種し、37°Cと5CO2を維持しながら培養した。34日毎、培養容器別に其々の培地で培養液の交換を行ないながら7日間培養した後、細胞数を測定した。図2、図4及び表5を通じて探って見ると、対照群であるADSCGMより試験群である本発明のABMM培地で、10のウシ胎児血清を含む培地が、5、6次継代培養で速い倍加時間を示すと同時に回収した細胞も多いため、本発明のABMM培地による脂肪由来の間葉系幹細胞の増殖率が高いことを確認した。各培養培地別、脂肪由来の間葉系幹細胞の増殖分析結果本発明のABMM培地で培養した間葉系幹細胞の免疫学的特性分析実施例1の12と13の培養培地で培養した細胞をTypeLEexpress処理して分離、400gで5分間遠心分離して細胞を獲得した後、FASC溶液で2回洗浄、洗浄した細胞を5×105個ずつ分注してantiCD166、CD105、CD90、CD44、CD29、CD73、HLAABC、CD31、CD34、CD45、CD80とHLADR抗体で2分間反応させた後に洗浄、FACS溶液で浮遊させ柔細胞分析器を利用して分析した。細胞表面を分析して、間葉系幹細胞の表現型を確認した。その結果、対照群であるMSCGMとADSCGM培地で培養した間葉系幹細胞と同じく、10のウシ胎児血清、2mMLグルタミンを含むABMM培地で培養した細胞で、CD166、CD105、CD90、CD44、CD29、CD73、HLAABCは陽性発現をCD14、CD31、CD34、CD45、CD80とHLADRは陰性発現を示し、間葉系幹細胞の特性を有することを確認した。ABMM培地で培養した間葉系幹細胞の免疫学的細胞特性ABMM培地で培養した間葉系幹細胞の分化能分析実施例1の12と13の培養培地で培養した細胞をトリプルX処理して分離、400gで5分間遠心分離して獲得した細胞をinvitro条件で多重分化能を確認した。培養した間葉系幹細胞の多重分化能確認のために、Schallmoserkなどの方法に従い、次のような分化を誘導した。骨形成細胞への分化は、図8に図示された通り、ABMM培地で早期培養した間葉系幹細胞を10のウシ胎児血清、10mMベータグリセロリン酸、50uMアスコルビン酸と107Mデキサメタゾンを含むαMEM培地で更に23週間培養分化した後、アルカリフォスファターゼ発現の有無は、カリフォスファターゼ染色で測定、カルシウムの蓄積は、フォンコッサ染色で確認した。脂肪細胞への分化は、図9に図示された通り、ABMM培地で早期培養した間葉系幹細胞を10のウシ胎児血清、107Mデキサメタゾン、100uMインドメタシンと10ugmLインシュリンを含むαMEM培地で更に2週間培養分化した後、oilRedO染色で細胞内に蓄積した脂肪滴を染色して確認した。軟骨細胞で分化を誘導するために、図10で図示された通り、ABMM培地で早期培養した5ラ105程度の間葉系幹細胞を300gで5分間遠心分離して細胞の塊を作った後、107Mdexamethasone、50uMアスコルビン酸、1nMピルビン酸ナトリウム、10ngmLTGFβ、100mgmLBMP2を含むDMEM低グルコース培地で更に3週間培養分化した。分化誘導された軟骨組織は、パラフィン包埋過程を経て5um連続切片を製作、HE染色、サフラニンO染色、染色、シリウスレッド染色、COMP染色、コラーゲンtypeIIとI染色を通じて、軟骨組織への分化能を確認した。本発明のABMM培地で培養した骨髄及び脂肪由来の間葉系幹細胞を2度の継代培養後、多重分化を誘導して、誘導していない対照群と比較した。骨形成細胞で誘導し、ALP染色とカルシウムの沈着を遂行した結果、分化を誘導しなかった対照群と違って、アルカリフォスファターぜalkalinephosphataseの発現及びカルシウムの沈着を確認した。また、脂肪細胞に誘導してoilRedO染色を遂行した結果、分化を誘導しなかった対照群と違って、脂肪細胞に分化することを確認した。間葉系幹細胞の塊で軟骨細胞への分化を誘導し、サフラニンO染色、アルシアンブルー染色、シリウスレッド染色、COMP染色、コラーゲンtypeIIとI染色を通じて、正常軟骨と類似するグリコサミノグリカン、プロテオグリカン、コラーゲンtypeIの発現が確認された。ABMM培地で培養した間葉系幹細胞の核型分析実施例1の12と13のように、相異なる個体から由来した骨髄及び脂肪組織などの成体組織から間葉計幹細胞を分離して、10のウシ胎児血清と2mMLグルタミンを含むABMM培地で10回の継代培養後、培養された間葉系幹細胞の核型を分析した。20個の分裂中期像をGTG分染法を利用して分析、国際命名規約に準じて核型を表記した。観察を行なった5個全ての分裂中期で、図11は、正常な46、XY核型を、図12は、正常な46、XX核型を示した。上述の通り、本発明の間葉系幹細胞の基本培養培地は、従来の間葉系幹細胞培養培地に比べ、間葉系幹細胞の細胞特性及び分化能を維持、また、細胞成長及び増殖に優れる培地であるため、これを利用して間葉系幹細胞を大量培養することで、純粋な間葉系幹細胞を獲得できる。