目的とする微生物のみが必須とする少なくとも1種の必須栄養成分を欠いた固体培地に採取した試料を播き、前記必須栄養成分を担持した多孔質膜を前記固体培地上に被い静置培養した後、該膜上に形成された微生物のコロニーを採取することを特徴とする微生物の分離方法前記多孔質膜が実質的に前記必須栄養成分よりなることを特徴とする請求項1記載の微生物の分離方法前記多孔質膜が多数の細孔よりなる高分子フィルムであり、該細孔中に、前記必須栄養成分の溶液が充填されていることを特徴とする請求項1記載の微生物の分離方法固体培地が微生物成育時の炭素源となる有機栄養成分を含まない培地であることを特徴とする請求項1乃至3のいずれか1項に記載の微生物の分離方法多孔質膜が実質的にセルロース繊維からなる紙でありセルロース分解微生物を含む試料をグルコース単位を持った有機栄養成分を含まない固体培地に播き、セルロース分解能を有する微生物を分離することを特徴とする請求項1乃至4のいずれか1項に記載のセルロース分解能を有する微生物の分離方法本発明の課題は、上記の事情に鑑み、特定の物質を分解する能力を有する微生物を自然環境等から効率よく簡易に分離する方法を提供することにある。本発明者は、上記課題を解決するために鋭意検討した結果、多孔質膜を用いることで上記課題を解決できることを見いだし、本発明を完成するに至った。すなわち、本発明は、1目的とする微生物のみが必須とする少なくとも1種の必須栄養成分を欠いた固体培地に採取した試料を播き、前記必須栄養成分を担持した多孔質膜を前記固体培地上に被い静置培養した後、該膜上に形成された微生物のコロニーを採取することを特徴とする微生物の分離方法である。本発明の第2の態様は、2前記多孔質膜が実質的に前記必須栄養成分よりなることを特徴とする1記載の微生物の分離方法である。本発明の第3の態様は、3前記多孔質膜が多数の細孔よりなる高分子フィルムであり、該細孔中に、前記必須栄養成分の溶液が充填されていることを特徴とする1記載の微生物の分離方法である。本発明の第4の態様は、4固体培地が微生物生育時の炭素源となる有機栄養成分を含まない培地であることを特徴とする1乃至3のいずれか1項に記載の微生物の分離方法である。本発明の第5の態様は、5多孔質膜が実質的にセルロース繊維からなる紙でありセルロース分解微生物を含む試料をグルコース単位を持った有機栄養成分を含まない固体培地に播き、セルロース分解能を有する微生物を分離することを特徴とする1乃至4のいずれか1項に記載のセルロース分解能を有する微生物の分離方法である。本発明により、従来法では得られなかったか、または極めて手数を要する方法でしか微生物を分離することができなかった微生物の分離が、たった1種類の土壌試料等からでも多種類の微生物が得られる点は、新奇微生物の探索に非常に有用である。また、請求項2の方法によれば多孔質膜は栄養基質の役割も兼ねており、特定の有機物分解微生物を選択的に分離することが可能である。さらに、本発明では、特別な施設や熟練操作を必要とせず、一般的な微生物学実験の知識を習得したものであれば、比較的容易に行える。本発明の最大の特徴は、目的とする微生物の必須とする栄養成分を存在させない固体培地上に微生物を含む溶液を播き、当該微生物溶液に前記目的とする微生物のみが必須とする栄養成分を膜状フィルムともいうに固定し、実質的に拡散しない状態で、前記微生物に接触させることにより、固体培地から膜側に移行した栄養成分と膜内の必須成分とにより、膜中に散在する微生物は、膜内でこれを栄養として分解摂取することで成育し、膜上面にコロニーとして出現する。しかし、膜内に存在する栄養成分を摂取できない微生物は、膜内で生育できず、従ってコロニーとして出現することはできない。また例え膜内の栄養成分を必須とする微生物同士であっても、膜内の微生物細胞は膜内支持体によって固定化され、胞子等の拡散も阻まれることから、個々の細胞が固定化されている各所で、それぞれ独立したコロニーを形成する。かくして、膜上に現れる微生物のコロニーは、完全に独立して別々の微生物群となるのである。これらの微生物を、それぞれ白金耳等の針を用いて採取分離し、常法により、液体又は、固体培地を用いて増殖するか、或いは必要により、本発明の方法を繰り返し行う継代培養により微生物の精製を行うこともできるのである。本発明の特徴の一つは、前記膜自体を、目的とする微生物の必須栄養成分で構成することも可能である。例えば、セルロースこれは、ポリグルコピラノースよりなる高分子であるよりなる所謂紙を用いればよいし、同様に、たん白質を分解する微生物を分取する場合は、絹織物や動物の毛の不織布或いはカゼイン、ゼラチン等のフィルムこれらは、微生物の分解により細孔を生じるので本明細書では多孔膜とするも用いることもできる。更に、特殊糖類等では、オブラード等も多孔膜として使用し得る。また、グリセリン、グリコール、ウレタン等の薬品類を分解する微生物に対しては、例えば、ポリエチレンやポリプロピレン等のポリオレフィン類、多孔膜、或いは発泡スチレン、塩化ビニル、ポリウレタン等の発泡多孔膜などの合成高分子プラスチックスの微多孔中に、それらの栄養成分の溶液を含浸等により充填して用いることもできる。なお、特殊な薬剤に対して耐性を有する菌などの微生物を分取する場合には、それらの抗菌剤をアンチ栄養剤として含む膜を用いることもできる。この場合も、本願発明では必須栄養成分と表現するものとする。また、培地としては一般に寒天培地が用いられるが、これに限定されるものではない。更に培地には、窒素源例えばアミノ酸、ビタミン類例えばチアミン等及び無機塩類例えば、ナトリウム、カリウム、マグネシウム、亜鉛その他の塩類またはペプトン例えば、カゼインペプトン、獣肉ペプトン、ゼラチンペプトン、大豆ペプトン等が必要により取捨選択して用いることができる。勿論本発明の培地には、分離の目的物である微生物のみが必須とする栄養成分の少なくとも1種は含ませてはならない。本発明の試料は複数種の微生物が混在するものであればよく、例えば土壌や汚泥或いは、生物の一部等、特に限定されないが、土壌など微生物が多く含まれる試料が好適である。以下に、本発明の分離方法を、セルロース分解微生物を分離する場合を例として、その手順を説明する。まず、腐葉土等、セルロース分解微生物が多く存在すると思われる土壌一般にこれらの土壌には1g中105~109個の微生物が含まれると言われるの約1gを採取し水を加えて懸濁液とし、これを多段階に希釈を行う。その後、目的とする微生物セルロース分解微生物に必須の成分であるグルコース或いは、ダルコピラノース核等のグルコース単位を持った糖類の基本骨格の化合物を含まない寒天培地上に1滴若しくは数滴塗布し、その上からろ紙を被う。この手順を図1を用いて更に説明する。図1の1に示すように、無機塩を加えた寒天培地をシャーレに入れ、約1gの土壌を5mlの水中に懸濁させた試料を、21滴約1ml、培地上に滴下し、3培地上に拡げ、4その上をろ紙で被い静置培養する。これを30°Cの温度下に2週間培養した場合のろ紙上に形成されたコロニーの模様を示す写真が図2である。これらのコロニー数の計算から、1g土壌あたり約2000個のセルロース分解微生物の存在が示唆された。形態的差違に基づき、62株の純粋分離株であることが分かった。分離株のDNA糸状菌はITS領域、細菌は16SrDNAを基に系統解析を行った結果、糸状菌分離株53株または10属に分類されたが、そのうち10株は既知近縁種とのDNA相同性が97以下であり、未報告種の可能性がある。以上のように、本発明の分離方法を利用すれば、1種類の土壌試料から、多種類の微生物を分離回収することが容易に行えるうえ、特別な施設やスキルを用いる必要もなく、まさに一般的な微生物学実験の知識を習得した者であれば容易に実施することができるのである。勿論、本発明の分離方法は、セルロース分解性微生物に限らず、被覆する膜としては、ろ紙に限らず、わら半紙を使えば、セルロースに加えてリグニンを分解する微生物が、また竹皮を使えばセルロース、リグニンに加えてキシラン分解微生物が、またオブラート膜を使えば、澱粉糖化微生物が、また絹布を使えばたん白質分解微生物が、更にポリエステル繊維の不織布等の多孔膜を使えば芳香族環分解微生物の探索や分離も可能となる。以下に、実施例等を挙げて本発明を具体的に説明するが、本発明の技術的範囲は、これら実施例等に限定されるものではない。<培養液の調製>微生物の分離には、ろ紙を炭素源として加えた無機塩固形培地pH53を用いた。無機塩固形培地の組成は20gl寒天、50gl硫酸アンモニウム、10glリン酸二水素カリウム、500mgl硫酸マグネシウム7水塩、100mgl塩化ナトリウム、100mgl塩化カルシウム2水塩、05mglホウ酸、04mgl硫酸マンガン5水塩、04mgl硫酸亜鉛7水塩、02mgl塩化鉄、02mglモリブデン酸ナトリウム2水塩、01mglヨウ化カリウム、004mgl硫酸銅5水塩、20mglイノシトール、04mglパントテン酸カルシウム、04mglナイアシン、04mglチアミン塩酸塩、04mgl塩酸ピリドキシン、02mglリボフラビン、02mglアミノ安息香酸、2mgl葉酸、2mglビオチンである。<土壌試料の採集>実験に供した土壌は山口大学演習林ブナを主とする雑木林から採集した。森林土壌の表面~深度3cmまでの土壌を採集し、2mmのステンレスふるいを通した。水分、pH、pHは各々220、53、及び32であった。土壌中の有機炭素および窒素量は117及び0064であった。<微生物の培養と分離>土壌試料を5mlの滅菌水に懸濁した。これを固形培地上に1ml加え、さらにその上にWhatmanno5ろ紙ワットマン社製を被せ、土壌微生物をろ紙と固形培地で挟み込む様にし、30°Cで2週間静置培養した。培養後にろ紙上に出現したコロニーをセルロース分解微生物として純粋分離した。<分離株の系統分類>分離株をYM培地でフラスコ培養し、菌体を得た。MasterPureYeastDNA精製キットを用いて各菌体からDNAを抽出し、PCRの鋳型とした。糸状菌ではITS1とITS4プライマーを用いてITS領域DNAをPCR増幅し、細菌では27Fと380Rプライマーを用いて16SリボソームDNA部分配列を増幅した。PCRの反応温度は94°Cfor1min、55°Cfor1min、72°Cfor2minの30サイクル、最後に7minat72°Cであった。増幅したPCR産物はダイターミネータ法で塩基配列を決定し、既知微生物DNAとデータベース比較することで系統分類を行った。<酵素活性の測定>分離株の酵素活性を分析するために、セルロース粉末およびキシランを含む培養液で分離株を1週間液体培養した。培養後、菌体を遠心分離3000rpm10minで除去し、残った培養上清をVivaspin20で遠心濃縮、さらに50mMクエン酸緩衝液で置換したものを酵素液とした。この酵素液を用いて各種酵素活性を測定した。エキソセルラーゼ活性、エンドセルラーゼ活性およびキシラナーゼ活性は、各々セルロース粉末、カルボキシメチルセルロース、キシランを10mgml濃度で含むクエン酸緩衝液に酵素液を添加し、50°Cで1時間加温後に生じた還元糖量を定量し、酵素活性を算出した。ラッカーゼ活性は、シリングアルダジンを基質として含むクエン酸緩衝液に酵素液を加えて30°Cで30分反応させ、525nm吸光度の増加を基に、活性を算出した。<実験に供した土壌の微生物数>実験に供した土壌中の微生物数は33X106CFUsgdrysoilであった。本法を用いて微生物を含む土壌懸濁液を培養したところ、培養2週間後に様々な形態学的特徴を持つ微生物コロニーがろ紙上に出現した図2。唯一の有機炭素源であるろ紙上に出現したコロニーはセルロース分解能を有していると考えられ、その微生物数は2150CFUsgdrysoilであった。出現コロニーの80が糸状菌、20が細菌であった。形態学的特徴に基づき、67個のコロニーを分離し、62株が継代培養可能であった。この62株の内訳は53株が糸状菌、9株が細菌であった。<分離株の系統分類>図3は各々糸状菌分離株と細菌分離株の系統樹を示している。得られた分離株は図中Strainと記載し、Strainの後ろの数字は株番号を示す。糸状菌株は10種類の属に渡る多様な種が確認された。これらの分離株のうち10株Strain9Strain11Strain18Strain19Strain33Strain34Strain44Strain50Strain55Strain63は既知種とのITS領域のDNA相同性が97以下であり、未報告種である可能性が示唆された。対比実験として、土壌試料を液体培地固形培地から寒天を除いたもので集積培養したところ、微生物種の多様性は完全に失われ、Penicillium属の株のみしか得られなかった図3。細菌分離株は2種類の属に分類されたが、内2株Strain25Strain47は既知種との16SリボソームDNA相同性が97以下であり、未報告種である可能性が示唆された図4。<分離株の酵素活性>分離株62株の中には系統学的に同種と考えられる株もあったことから、これらの中から代表株を28株選出し、これらの株の酵素活性を測定した。表1には酵素活性の測定結果を示している。全ての被検株でエキソセルラーゼ活性が認められ、他に比して強い酵素活性を持つ株も見られた。また、分離株の多くがエンドセルラーゼ活性とキシラナーゼ活性も併せ持ち、さらにラッカーゼ活性を有するものもいた。