"シホウイルス科Siphoviridaeファミリーの形態型morphotypeグループに属し、サルモネラエンテリティディスSalmonellaenteritidis、サルモネラティフィムリウムSalmonellatyphimurium、サルモネラガリナルムSalmonellagallinarum及びサルモネラプロラームSalmonellapullorumからなる群から選択される少なくとも1つのサルモネラバクテリアに対して特異的な殺菌活性を有する、分離されたバクテリオファージであって、次の属性の1つで特定されるものである。i前記バクテリオファージは、正二十面体の頭部isometriccapsid及び長く非収縮性の尾longnoncontractiletailから構成された形態学的構造を有する。ii前記バクテリオファージは、全ゲノムのサイズがが44~49kbpである。iii40~43kDa、79~82kDa、14~16kDa、59~62kDa及び41~44kDaのサイズの主要構造タンパク質を有する。前記バクテリオファージが、図1に示す形態を有するものである請求項1に記載のバクテリオファージ。前記バクテリオファージが、配列番号1~5からなる群から選択される少なくとも1つの核酸分子をゲノム全体の一部として含むものである請求項1に記載のバクテリオファージ。前記バクテリオファージは、そのゲノムDNAを鋳型とし、配列番号6及び7、配列番号8及び9、配列番号10及び11、配列番号12及び13、並びに配列番号14及び15からなる群から選択される1つ又はそれ以上のプライマーセットを用いたPCRを行う際に、約1~4kbpのサイズのPCR産物を生じるものである請求項1に記載のバクテリオファージ。前記バクテリオファージが、pH3.0~11.0の範囲で耐酸性を有し、37~70°Cの範囲で耐熱性を有し、60°Cの乾燥条件で耐乾性を有するものである請求項1に記載のバクテリオファージ。前記バクテリオファージが、寄託番号KCCM11148Pで同定されるものである請求項1に記載のバクテリオファージ。請求項1~6のいずれかのバクテリオファージを有効成分として含む、サルモネラエンテリティディス、サルモネラティフィムリウム、サルモネラガリナルム及びサルモネラプロラームからなる群から選択される少なくとも1つのサルモネラ菌により引き起こされる感染症の予防又は治療用組成物。前記サルモネラエンテリティディス又はサルモネラティフィムリウムにより引き起こされる感染症がサルモネラ症又はサルモネラ食中毒であり、サルモネラガリナルムにより引き起こされる感染症が家禽チフスであり、サルモネラプロラームにより引き起こされる感染症が雛白痢である請求項7に記載の組成物。請求項1~6のいずれかのバクテリオファージを有効成分として含む、サルモネラエンテリティディス、サルモネラティフィムリウム、サルモネラガリナルム及びサルモネラプロラームからなる群から選択される少なくとも1つのサルモネラ菌により引き起こされる感染症の予防又は治療用の抗生物質組成物。請求項1~6のいずれかのバクテリオファージを有効成分として含む、家畜用飼料又は飲用水。請求項1~6のいずれかのバクテリオファージを有効成分として含む、消毒剤又は洗浄剤。請求項1~6のいずれかのバクテリオファージを、それを必要とする動物に投与する段階を含む、サルモネラエンテリティディス、サルモネラティフィムリウム、サルモネラガリナルム及びサルモネラプロラームからなる群から選択される少なくとも1つのサルモネラ菌により引き起こされる感染症を予防又は治療する方法。請求項7の組成物を、それを必要とする動物に投与する段階を含む、サルモネラエンテリティディス、サルモネラティフィムリウム、サルモネラガリナルム及びサルモネラプロラームからなる群から選択される少なくとも1つのサルモネラ菌により引き起こされる感染症を予防又は治療する方法。抗生物質の誤用乱用による抗生物質耐性、食品内の残留抗生物質の有害な活性、及び広範囲な抗生物質の使用に伴う問題などを解決するために、本発明者らは家畜の主要な疾病を引き起こすサルモネラ菌を選択的に死滅させる活性を有する新規バクテリオファージを自然界から分離し、その形態的、生化学的及び遺伝的特性を確認した。本発明者らは、前記バクテリオファージが、有益菌に影響を与えることなく、サルモネラエンテリティディスSalmonellaenteritidisSE、サルモネラティフィムリウムSalmonellatyphimuriumST、サルモネラガリナルムSalmonellagallinarumSG及びサルモネラプロラームSalmonellapullorumSPを選択的に死滅させる活性を有し、耐酸性、耐熱性及び耐乾性を有することを確認し、これをサルモネラエンテリティディス又はサルモネラティフィムリウムにより引き起こされる家畜のサルモネラ症、及び汚染された畜産品により引き起こされるサルモネラ食中毒、及びサルモネラガリナルム又はサルモネラプロラームにより引き起こされる感染症、特に、家禽チフス又は雛白痢の予防又は治療用組成物、並びにサルモネラ菌を制御するための様々な製品、例えば動物飼添加剤、動物用飲用水、畜舎消毒剤及び肉製品用洗浄剤にも適用できることを確認し、本発明を完成するに至った。本発明は、サルモネラエンテリティディス、サルモネラティフィムリウム、サルモネラガリナルム及びサルモネラプロラームからなる群から選択される少なくとも1つのサルモネラ菌に対して特異的な殺菌活性を有する新規バクテリオファージを提供することを目的とする。また、本発明は、前記バクテリオファージを有効成分として含む、サルモネラエンテリティディス、サルモネラティフィムリウム、サルモネラガリナルム及びサルモネラプロラームからなる群から選択される少なくとも1つのサルモネラ菌により引き起こされる感染症の予防又は治療用組成物を提供することを目的とする。さらに、本発明は、前記バクテリオファージを有効成分として含む、家畜用飼料及び飲用水を提供することを目的とする。さらに、本発明は、前記バクテリオファージを有効成分として含む、消毒剤及び洗浄剤を提供することを目的とする。さらに、本発明は、前記バクテリオファージを有効成分として含む組成物を用い、サルモネラエンテリティディス又はサルモネラティフィムリウムにより引き起こされる家畜のサルモネラ症又はサルモネラ食中毒を予防又は治療する方法を提供することを目的とする。さらに、本発明は、サルモネラガリナルム又はサルモネラプロラームにより引き起こされる感染症の家禽チフス又は雛白痢を予防又は治療する方法を提供することを目的とする。本発明の新規バクテリオファージは、サルモネラエンテリティディス、サルモネラティフィムリウム、サルモネラガリナルム及びサルモネラプロラームに特異的な殺菌活性を有し、優れた耐酸性、耐熱性及び耐乾性を有する。よって、前記バクテリオファージは、サルモネラエンテリティディス、サルモネラティフィムリウム、サルモネラガリナルム及びサルモネラプロラームにより引き起こされるサルモネラ症、サルモネラ食中毒、家禽チフス又は雛白痢を含む感染症の予防又は治療に有用であるだけでなく、サルモネラエンテリティディス、サルモネラティフィムリウム、サルモネラガリナルム及びサルモネラプロラームの制御に用いることができる。本発明の一態様は、サルモネラエンテリティディスSE、サルモネラティフィムリウムST、サルモネラガリナルムSG及びサルモネラプロラームSPに特異的な殺菌活性を有する新規バクテリオファージに関する。本発明者らは、屠鶏場から下水試料を採取し、それらからSE、ST、SG及びSPに特異的な殺菌活性を有するバクテリオファージを分離した図2及び表1参照。電子顕微鏡で形態学的に観察した結果、本発明のバクテリオファージは、正二十面体の頭部isometriccapsid及び長く非収縮性の尾longnoncontractiletailを特徴とする、シホウイルス科Siphoviridaeファミリーの形態型morphotypeグループに属するものである図1参照。本発明のバクテリオファージは、約41kDa、80kDa、15.5kDa、60kDa及び43kDaの主要構造タンパク質を含む図3参照。また、本発明のバクテリオファージは、全ゲノムのサイズが約44.1~49kbpであり図4参照、配列番号1~5からなる群から選択される少なくとも1つの核酸分子を全ゲノムの一部として含む。また、前記ヌクレオチド配列に基づいて他種との遺伝的類似性を比較した結果、本発明のバクテリオファージと既知のバクテリオファージは非常に低い遺伝的類似性を示すので、本発明のバクテリオファージは新規のものである表2参照。より具体的には、本発明のバクテリオファージに対して、配列番号6及び7、配列番号8及び9、配列番号10及び11、配列番号12及び13、並びに配列番号14及び15からなる群から選択される少なくとも1つのプライマーセットを用いてPCRを行うと、その結果物であるPCR産物はそれぞれ約3.5kbp、2.1kbp、1.6kbp、1.2kbp及び1.4kbpのサイズを有する図5参照。また、本発明による前記バクテリオファージをSE、ST、SG及びSPに感染させることによる溶菌斑ソフトアガーにおいて1つのバクテリオファージにより宿主細胞が溶菌されて形成される透明領域が同じサイズ及び濁度であることが確認された図2参照。本発明のバクテリオファージは、耐酸性及び耐熱性の生化学的特性を有する。広範なpH範囲及び温度範囲でバクテリオファージの安定性を調査した結果、本発明のバクテリオファージは、pH3.0~11.0の範囲図6参照、及び37~70°Cの温度範囲図7参照で生存できることが確認された。また、本発明のバクテリオファージは、高温で乾燥させた後もその活性を安定して維持する耐乾性を有する図8参照。このような耐酸性、耐熱性及び耐乾性は、本発明のバクテリオファージが、SE、ST、SG及びSPにより引き起こされる家畜疾病、又は汚染された家畜により引き起こされるヒト疾病の予防又は治療用組成物の生産において、様々な温度及びpH条件下で適用できるようにする。また、本発明のバクテリオファージは、野生株のSE、ST、SG及びSPに感染させることができる表3参照。本発明のバクテリオファージをラットに経口投与しても、体重変化、死亡個体数、一般症状及び臓器異常に変化がない図9、表4及び表5参照。また、本発明のバクテリオファージをブロイラーの飼料添加剤として使用しても、ブロイラーの成長、臓器や筋肉の発達に悪影響がない表6及び表7参照。効能、消毒能力及び洗浄能力を調査した結果、バクテリオファージを家畜農場に用いると、本発明のバクテリオファージは、サルモネラSEの繁殖及び排出を抑制することにより、サルモネラSEを効果的に制御することができ表8及び表9参照、陽性対照群として用いられた消毒剤に比べて様々な条件で優れ、所定レベルのサルモネラ殺菌活性を有する。これらの事実は、本発明のバクテリオファージがサルモネラ菌を制御する様々な製品として適用できることを意味する。本発明のバクテリオファージは、SE、ST、SG及びSPに対して特異的な殺菌活性及び前述した特性を有するバクテリオファージをΦCJ8と命名し、2010年12月14日付けで韓国微生物保存センターKoreanCultureCenterofMicroorganisms,ソウル市西大門区弘済1洞361-221に寄託番号第KCCM11148P号として寄託した。また、本発明の一態様は、前記バクテリオファージを有効成分として含む、サルモネラエンテリティディス、サルモネラティフィムリウム、サルモネラガリナルム及びサルモネラプロラームからなる群から選択される少なくとも1つのサルモネラ菌により引き起こされた感染症の予防又は治療用組成物に関する。本発明のバクテリオファージは、サルモネラエンテリティディス、サルモネラティフィムリウム、サルモネラガリナルム及びサルモネラプロラームに対して特異的に殺菌活性を有するので、本発明のバクテリオファージをこれらの菌により引き起こされる疾病の予防又は治療に用いることができる。好ましい一態様として、本発明の組成物は抗生物質をさらに含んでもよい。前記感染症の例は、サルモネラエンテリティディス又はサルモネラティフィムリウムによる疾病としてサルモネラ症又はサルモネラ菌食中毒を含み、サルモネラガリナルムによる疾病として家禽チフスを含み、サルモネラプロラームによる疾病として雛白痢を含むことが好ましいが、これに限定されるものではない。本発明において、サルモネラ症という用語は、サルモネラ菌感染による発熱、頭痛、下痢、嘔吐などの症状を総称するものである。すなわち、サルモネラ症は、腸チフスのような敗血症及び、食中毒、腸炎、急性菌血症のような急性胃腸炎との2つの代表的な症状を伴うサルモネラ属のバクテリア感染である。本発明において、予防という用語は、組成物の投与により疾病を抑制したり、発症を遅延させる全ての行為を意味する。これに関連して、治療という用語は、前記組成物の投与により患者の症状を好転させたり、好適に変更させる全ての行為を意味する。本発明の前記組成物は、5×102~5×1012pfu/mL、好ましくは1×106~1×1010pfu/mLの量で本発明のバクテリオファージを有効成分として含む。本発明の組成物は、薬学的に許容される担体をさらに含んでもよく、担体と共に製剤化されて食品、医薬品及び飼料添加剤として提供される。本発明において、薬学的に許容される担体という用語は、生物体を刺激せず、有効成分の生物学的活性及び特性を阻害しない担体又は希釈剤を意味する。液状溶液として製剤化される組成物において許容される薬学的担体としては、滅菌及び生体適合性に優れた、食塩水、滅菌水、リンゲル液、緩衝食塩水、アルブミン注射液、デキストロース溶液、マルトデキストリン溶液、グリセリン、エタノール及びこれらの成分の2つ以上を混合して用いることができ、必要に応じて抗酸化剤、緩衝液、静菌剤などの他の通常の添加剤を添加することができる。また、希釈剤、分散剤、界面活性剤、結合剤及び潤滑剤をさらに添加して水溶液、懸濁液、乳濁液などの注射用剤形、丸薬、カプセル、顆粒又は錠剤に製剤化することができる。本発明の予防又は治療用組成物は、疾患部位に塗布又は噴霧する方法で用いることができ、その他、経口投与又は非経口投与により投与することができ、非経口投与の場合は、静脈内投与、腹腔内投与、筋肉内投与、皮下投与又は局所投与により投与することができる。本発明による組成物の好適な塗布、噴霧及び投与量は、製剤化方法、投与方式、対象となる動物及び患者の年齢、体重、性別、症状、食餌、投与時間、投与経路、排泄速度及び反応感度などの要因により異なる。患者に前記薬学的組成物を投与する場合に、担当の医師又は獣医が適切な医学的判断の範囲内で適切な一日総投与量を容易に決定できることは、当業者にとって明らかである。本発明の組成物を有効成分として含む経口投与用製剤は、錠剤、トローチ剤、ドロップ剤、水性又は油性懸濁液、調製された粉末又は顆粒、エマルジョン、硬質又は軟質カプセル、シロップ又はエリキシル剤の形態であってもよい。錠剤やカプセルなどの経口投与用形態は、ラクトース、サッカロース、ソルビトール、マンニトール、デンプン、アミロペクチン、セルロース、ゼラチンなどの結合剤、第二リン酸カルシウムなどの賦形剤、トウモロコシデンプン、サツマイモデンプンなどの崩壊剤、ステアリン酸マグネシウム、ステアリン酸カルシウム、ステアリルフマル酸ナトリウム又は、ポリエチレングリコールワックスなどの潤滑油を含んでもよい。カプセル剤形の場合は、脂肪油などの液体担体をさらに含んでもよい。非経口投与用剤形の場合、本発明の組成物は、皮下注射、静脈注射、筋肉注射などの注射剤形、坐剤の剤形、呼吸器から吸入可能なエアゾール剤などのスプレー剤形に製剤化することができる。注射剤形に製剤化する場合は、本発明の組成物を安定剤又は緩衝剤と共に水で混合して溶液又は懸濁液とし、これをアンプル又はバイアルの単位投与形態で製剤化することができる。エアゾール剤などのスプレー剤形の場合は、水分散した濃縮物又は湿潤粉末を噴霧するための推進剤などが添加剤と共に配合される。本発明において、抗生物質という用語は、動物に提供されて菌を死滅させたり、それらの成長を阻害する物質又は化合物を意味し、防腐剤、殺菌剤及び抗菌剤を含むものである。前記動物は、ヒトを含む哺乳動物である。本発明のバクテリオファージは、従来の抗生物質に比べてサルモネラ菌に対する特異性が非常に高いという利点があり、有益菌を死滅させることなく、特定の病原菌のみを死滅させることができる。また、本発明のバクテリオファージは、薬物耐性を引き起こさないので、長い製品寿命lifecyclingを有する新規抗生物質として提供される。また、本発明の一態様は、前記バクテリオファージを有効成分として含む家畜用飼料又は飲用水に関する。畜産及び水産業で用いられる飼料添加用抗生物質は予防目的で用いられている。しかし、現在用いられている飼料添加剤抗生物質のほとんどは耐生菌の発生を引き起こす傾向にあり、家畜に残留する抗生物質がヒトに伝達されるという問題がある。このような残留抗生物質の摂取は、抗生物質に耐性を有するヒト病原菌を生成し、疾病の拡散を招くことがある。また、通常多くの種類の飼料添加用抗生物質は動物飼料と混合して用いられるので、これは多剤耐性株の発生原因となる。よって、本発明のバクテリオファージは、上記問題を解決することができ、充分に環境にやさしい飼料添加用抗生物質として用いることができる。本発明による家畜用飼料は、飼料製造時に直接添加したり、飼料に別途に添加する形態に製造することができる。家畜用飼料において、本発明のバクテリオファージは液状又は乾燥状態であり、乾燥した粉末形態で存在することが好ましい。この場合、本発明のバクテリオファージは、通風乾燥、自然乾燥、噴霧乾燥又は凍結乾燥により乾燥することができるが、前記乾燥過程は本発明を限定するものではない。本発明のバクテリオファージは、粉末形態で飼料の総重量に対して0.05~10重量、好ましくは0.1~2重量の量で混合することができる。前記家畜用飼料は、本発明のバクテリオファージ以外に、飼料の保存性を向上させることのできる通常の添加剤をさらに含んでもよい。本発明の飼料添加剤には、他の非病原性の微生物をさらに添加することができる。添加できる微生物は、プロテアーゼ、リパーゼ及びインベルターゼを産生するバチルスサブティリスBacillussubtilis、ウシの胃のような嫌気条件で生理的活性及び有機物分解機能を示すラクトバチルス菌株Lactobacillussp、家畜の体重を増加させ、牛乳の生産量を増やし、飼料の消化と吸収を助けるアスペルギルスオリザエAspergillusoryzaeを含む糸状菌非特許文献17、及びサッカロマイセスセレビシエSaccharomycescerevisiaeを含む酵母非特許文献18からなる群から選択される。本発明のバクテリオファージを含む飼料は、穀物類、堅果類、食品加工副産物、海藻、繊維質類、製薬副産物、油類、デンプン類、ミール類及び穀物副産物などの植物性飼料、並びにタンパク質類、無機物類、脂肪類、単細胞タンパク質類、動物性プランクトン類及び食品廃棄物などのような動物性飼料とを含むが、これらに限定されるものではない。本発明のバクテリオファージを含む飼料添加剤には、結着剤、乳化剤、保存剤などの品質低下を防止するための添加剤、アミノ酸剤、ビタミン剤、酵素剤、生菌剤、香味剤、非タンパク窒素、ケイ酸塩剤、緩衝剤、着色剤、抽出剤、オリゴ糖などの効用増大のための添加剤があるが、これらに限定されるものではない。本発明のバクテリオファージを含む飲用水を供給すると、家畜の腸内サルモネラ菌の数を持続的に減少させることができる。その結果、サルモネラに汚染されていない家畜を生産することができる。また、本発明の一態様は、前記バクテリオファージを有効成分として含む洗浄剤又は消毒剤を提供する。本発明のバクテリオファージを有効成分として含む含む消毒剤は、例えば食中毒に対する食品衛生に非常に有用である。具体的には、前記消毒剤は、サルモネラ汚染を予防するための物質又は食品添加剤として用いることができるだけでなく、サルモネラに汚染されていない家畜の生産に用いることができる。サルモネラを除去するために、前記消毒剤を家庭内の下水に噴霧することもでき、家禽小屋、屠殺場、殺処分場、厨房及び炊事施設に適用することもできる。また、本発明のバクテリオファージを有効成分として含む洗浄剤は、サルモネラ菌により既に感染しているか、又は感染する可能性のある、生きた動物の皮膚、翼などの体の各種部位に用いることができる。また、本発明の一態様は、前記バクテリオファージ又はそれを含む組成物を用い、サルモネラエンテリティディス、サルモネラティフィムリウム、サルモネラガリナルム及びサルモネラプロラームからなる群から選択される少なくとも1つのサルモネラ菌により引き起こされる感染症を予防又は治療する方法に関する。本発明の前記組成物は、薬学的製剤の形態で動物に投与したり、家畜の飼料又は飲用水に混合してこれを摂取させる方法で投与することができ、飼料添加剤の形態で飼料に混合して投与することが好ましい。本発明において、前記動物は、ウシ、ブタ、ニワトリ、家禽及びヒトを含むが、これらに限定されるものではない。本発明の組成物は、標的組織に到達するものであれば、経口又は非経口の様々な経路を介して投与することができる。具体的には、口腔、直腸、局所、静脈内、腹腔内、筋肉内、動脈内、経皮、鼻腔内及び吸入経路を介して通常の方式で投与することができる。本発明の治療方法は、本発明の組成物を薬学的有効量で投与することを含む。担当の医師又は獣医が適切な医学的判断の範囲内で適切な一日総投与量を容易に決定できることは、当業者にとって明らかなことである。特定患者に対する治療的有効量は、達成しようとする反応の種類と程度、患者の年齢、体重、健康状態、性別及び食餌、投与時間、投与経路及び組成物の分泌率、治療期間、共に用いられる他の薬剤の有無による実際の組成物などの医薬分野で周知の様々な因子に応じて異なる量で適用することが好ましい。以下、実施例を挙げて本発明をより詳細に説明する。しかし、これらの実施例は本発明を例示的に説明するためのものであり、本発明の範囲がこれらの実施例に限定されるものではない。実施例1サルモネラバクテリオファージの分離1-1.バクテリオファージのスクリーニング及び単一バクテリオファージの分離全羅南道務安に位置する屠鶏場及び近所の下水終末処理場から得た各試料50mLを遠心分離チューブに移し、4000rpmで10分間遠心分離し、その後上澄液を0.45μmフィルターで濾過した。試料濾液18mLをSE振盪培養液OD600=2150μL及び10×LB培地トリプトン10g,酵母抽出物5g,NaCl10g,最終体積1l2mLと混合した。これを37°Cにて18時間培養し、その後培養液を4000rpmで10分間遠心分離し、得られた上澄液を0.45μmフィルターで濾過した。0.7寒天agarw/v3mLとSE振盪培養液OD600=2150μLの混合液をLBプレートに注いで固めた。こうして製造されたプレート上に試料培養濾液10μLを塗布し、その後37°Cにて18時間培養した0.7アガーをトップアガーとして用い、ファージ溶解物の滴定をソフトアガーオーバーレイsoftagaroverlay方法といわれるトップアガー上で行った。。ファージ溶解物を含む培養培地試料を適切に希釈し、SSE振盪培養液OD600=2150μLを混合し、その後ソフトアガーオーバーレイ方法により単一溶菌斑を得た。1つの溶菌斑は1つのバクテリオファージから構成されるので、単一バクテリオファージを純粋に分離するために、1つの溶菌斑を採取して400μLのSM溶液NaCl5.8g,MgSO47H2O2g,1MTris-ClpH7.550mL,H2O,最終体積1Lに入れ、室温にて4時間静置して単一バクテリオファージを分離した。分離したバクテリオファージを増幅するために、単一バクテリオファージ溶液から上澄液100μLを採取し、0.7寒天5mL及びSE振盪培養液100μLと混合し、LBプレート直径90mmでソフトアガーオーバーレイ方法を行った。溶菌が完了したプレートに5mLのSM溶液を注ぎ、その後室温にて4時間軽く振盪してトップアガー中のバクテリオファージを溶出させた。バクテリオファージが溶出したSM溶液を回収し、その後最終体積の1となるようにクロロホルムchloroformを添加して10分間十分に混合した。4000rpmで10分間遠心分離し、その後得られた上澄液を0.45μmフィルターで濾過し、使用するまで冷蔵保管した。1-2.バクテリオファージの大量培養選択されたバクテリオファージをSEにより大量培養した。SEを振盪培養した。1.5×1010cfucolonyformingunitのアリコートAliquotを4000rpmで10分間遠心分離し、そのペレットを4mLのSM溶液に再懸濁した。これにバクテリオファージを1.5×106pfuplaqueformingunitで接種してMOImultiplicityofinfection=0.0001とし、その後37°Cにて20分間静置した。この溶液を150mLのLB培地が入ったフラスコに接種し、その後37°Cにて5時間培養した。最終体積の1となるようにクロロホルムを添加し、20分間振盪した。DNaseIとRNaseAをそれぞれ最終濃度1μg/mLとなるように添加し、この溶液を37°Cにて30分間静置した。最終濃度がそれぞれ1Mと10w/vとなるようにNaClとPEGpolyethyleneglycolを添加し、その後4°Cにてさらに3時間静置した。4°Cにて12000rpmで20分間遠心分離して上澄液を除去した。こうして得られたペレットを5mLのSM溶液に再懸濁し、室温にて20分間静置した。この懸濁液に4mLのクロロホルムを添加し、十分に混合した。4°Cにて4000rpmで20分間遠心分離を行い、その後上澄液を0.45μmフィルターで濾過し、グリセリンglycerol密度勾配密度:40,5のグリセリンを用いた超遠心分離4°C,35,000rpm,1時間によりバクテリオファージを精製した。精製したバクテリオファージをΦCJ8と命名した。バクテリオファージΦCJ8は300μLのSM溶液に再懸濁し、その後力価を測定した。前記バクテリオファージΦCJ8は、2010年12月14日付けで韓国微生物保存センターKoreanCultureCenterofMicroorganisms,ソウル市西大門区弘済1洞361-221に寄託番号第KCCM1100148P号として寄託した。実施例2ΦCJ8のサルモネラ菌感染調査選択されたバクテリオファージがSE以外のサルモネラ菌に対して溶菌活性を有するか否かを分析するために、他のサルモネラ菌に交差感染を試みた。その結果、ΦCJ8はSCSalmonellacholeraesuis、SDSalmonelladerby、SASalmonellaarizonae及びSBSalmonellabongoriには感染しなかったが、SESalmonellaenteritidis、STSalmonellatyphimurium、SGSalmonellagallinarum及びSPSalmonellapullorumには感染した。前記結果を表1及び図1に要約した。実施例3ΦCJ8の形態観察精製されたΦCJ8を0.01ゼラチン溶液に希釈し、その後2.5グルタルアルデヒドglutaraldehyde溶液で固定した。前記試料を炭素コーティングされたマイカプレートca.2.5×2.5mmに滴下し、10分間順応させ、滅菌された蒸留水で洗浄した。炭素フィルムを銅グリッドcoppergridに取り付け、2酢酸ウラニルuranylacetateで3~5秒間染色し、乾燥した。透過電子顕微鏡LIBRA120,CarlZeisstransmissionelectronmicroscope,80kV,倍率×120,000~×200,000で観察したところ、精製されたΦCJ8は、形態学的に正二十面体の頭部と長く非収縮性の尾とから構成されることが分かり、シホウイルス科Siphoviridaeファミリーの形態型グループに属することを示した。実施例4ΦCJ8のタンパク質パターン分析力価titer1012pfu/mLの精製されたΦCJ8溶液15μLと5SDS試料溶液3μLを混合し、5分間沸騰させた。これを15SDS-PAGEゲルに展開した。次に、ゲルをクマシーブルーcoomassieblueで常温にて1時間染色した。図3に示すように、約41kDa、80kDa、15.5kDa、60kDa及び43kDaで主要バンドが観察された。実施例5ΦCJ8の全ゲノムDNAサイズΦCJ8のゲノムDNAは超遠心分離により抽出した。具体的には、精製されたΦCJ8培養液にEDTAethylenediaminetetraaceticacid,pH8.0、タンパク質分解酵素KproteinaseK及びSDSsodiumdodecylsulfateをそれぞれ最終濃度が20mM、50μg/mL及び0.5w/vとなるように添加し、その後50°Cにて1時間静置した。同量のフェノールpH8.0を添加して十分に混合した。室温にて12000rpmで10分間遠心分離を行い、得られた上澄液に同量のPCphenol:chloroform=1:1を添加して十分に混合した。室温にて12,000rpmで10分間遠心分離を行って上澄液を得て、総体積の1/10の3M酢酸ナトリウムsodiumacetateと2倍の体積の冷95エタノールethanolを添加し、その後-20°Cにて1時間静置した。その後、0°Cにて12,000rpmで10分間遠心分離して上澄液を完全に除去した。こうして得られたDNAペレットを50μLのTETrisEDTA,pH8.0溶液に溶解した。抽出したDNAを10倍に希釈し、OD260で吸光度を測定して濃度を決定した。1μgの全ゲノムDNAを1PFGEpulsefieldgelelectrophoresisアガロースゲルにロードし、その後BIO-RADPFGEシステムの7番プログラムsizerange25100kbpswitchtimeramp0420secondslinearshapeforwardvoltage180Vreversevoltage120Vを用いて常温にて20時間展開させた。図4に示すように、本発明のΦCJ8のゲノムDNAは約44.1~49kbpの長さであった。実施例6ΦCJ8の遺伝分析精製されたバクテリオファージΦCJ8の遺伝分析は、ΦCJ8のゲノムDNA5μgをSalIとXhoI、EcoRVとNruI、HinCIIとPvuIIの制限酵素で同時に処理して開始した。また、pBluescriptIISKベクトルをEcoRVで切断し、CIPcalfintestinalalkalinephosphataseで処理した。切断されたゲノムDNAとベクトルの量が3:1となるように混合し、その後16°Cにて2時間ライゲーションした。こうして得られた発現ベクターを大腸菌DH5α細胞に形質転換させ、その後アンピシリンampicillin及びX-gal5bromo4chloro3indolylbetaDgalactopyranoside含有LBプレートに接種して青白コロニー選別を行った。選別されたコロニーをアンピシリン含有LB培地で16時間振盪培養した。次に、プラスミド精製キットPromegaを用いてプラスミドを抽出した。抽出されたプラスミドのクローニングは、M13フォワード及びリバース配列番号16及び17のプライマーセットを用いて確認し、挿入断片のサイズが1kbp以上のもののみ選別した。こうして選別されたプラスミドは前記プライマーセットを用いて配列分析した。こうして得られた塩基配列を配列番号1~5に示し、これらそれぞれは1~4kbpのサイズを有する。配列番号1~5の塩基配列をNCBIBlastXとBlastNプログラムを用いて塩基配列の相同性を分析し、その結果を表2に示す。実施例7ΦCJ8特異的プライマーを用いたPCR分析ΦCJ8を解明するために、ΦCJ8に特異的なプライマーを配列番号1~5の塩基配列を基に作製した。バクテリオファージΦCJ8のゲノムDNAを鋳型とし、配列番号6及び7、配列番号8及び9、配列番号10及び11、配列番号12及び13、並びに配列番号14及び15をそれぞれプライマーセットとしてPCRを行った。0.1μgのバクテリオファージのゲノムDNAと0.5pmoleの各プライマーセットとなるようにプレミックスpremixBioneerに添加し、最終体積が20μLとなるように調整した。94°C、10分間の初期変性denaturation後、94°C、1分間の変性、52°C、1分間のアニーリングannealing、及び72°C、1分間の重合polymerizationを35回繰り返し、最終的に72°C、10分間の伸張を行うことによりPCRを行った。こうして得られたPCR産物は、それぞれ約3.5、2.1、1.6、1.2及び1.4kbpの長さであった。前記結果を図5に示す。実施例8ΦCJ8のpHに対する安定性ΦCJ8が家畜の胃腸内の低いpHで生存できるか否かを確認するために、広範なpH範囲pH2.1、2.5、3.0、3.5、4.0、5.5、6.4、6.9、7.4、8.2、9.0、9.8及び11.0でその安定性を調査した。様々なpH溶液酢酸ナトリウム緩衝液sodiumacetatebufferpH2.1、4.0、5.5及び6.4、クエン酸ナトリウム緩衝液sodiumcitratebufferpH2.5、3.0及び3.5、リン酸ナトリウム緩衝液sodiumphosphatebufferpH6.9及び7.4、並びにトリス塩酸塩TrisHClpH8.2、9.0、9.8及び11.0は0.2Mの濃度を有する。各pHの溶液180μLとバクテリオファージ溶液1.1×1011pfu/mL20μLを混合し、常温にて2時間静置した。これらを段階希釈し、ソフトアガーオーバーレイ方法で各希釈液10μLを37°Cにて18時間培養し、ファージ溶液の力価を測定した。pH変化による力価変化を比較して相対的安定性を確認した。その結果、前記バクテリオファージは、pH3.0までは活性を失わずに安定性を維持した。しかし、pH2.5又はそれ以下では活性が消失した。前記結果を図6に示す。実施例9ΦCJ8の温度安定性バクテリオファージを飼料添加剤として用いる場合に剤形化過程で発生する熱に対する安定性を確認するため、次の実験を行った。1.0×1011pfu/mLの力価のΦCJ8溶液200μLを37、45、53、60、70及び80°Cにてそれぞれ0、10、30、60及び120分間静置した。処理した実験培養液を段階希釈し、ソフトアガーオーバーレイ方法で各希釈液10μLを37°Cにて18時間培養し、ファージ溶液の力価を測定した。温度及び静置時間による力価変化を比較して相対的安定性を測定した。その結果、前記バクテリオファージは、60°Cにて2時間静置しても活性を失わなかった。しかし、前記バクテリオファージは、80°Cにて10分以上静置すると活性を急速に消失した。前記結果を図7に示す。実施例10ΦCJ8の乾燥に対する安定性バクテリオファージを飼料添加剤として用いる場合に剤形化過程で発生する乾燥条件に対する安定性を確認するため、次の実験を行った。耐熱性実験結果に基づき、本実験は高温乾燥条件60°Cにて120分間で行われた。ΦCJ8溶液6.0×1011pfu/mL200μLをスピードバックSpeedVacuumConcentrator5301Eppendorfで乾燥させた。こうして得られたペレットpelletをSM溶液200μLに入れ、4°Cにて1日間完全に再懸濁した。前記溶液を段階希釈し、ソフトアガーオーバーレイ方法で各希釈飼料10μLを37°Cにて18時間培養し、ファージ溶液の力価を測定した。乾燥前後の力価の変化を比較して相対的安定性を測定した。その結果、本発明のバクテリオファージΦCJ8の活性は約50倍の減少を示した。前記結果を図8に示す。実施例11ΦCJ8の野生サルモネラ菌株に対する感染範囲の調査SESGSCSE2282、STATCCST14028、SGSGSCSG2293及びSPSGSCSP2295以外にも、ΦCJ8の溶菌活性を、ソウル大学校獣医科大学鳥類疾病学室、国立獣医科学検疫院及び疾病管理本部で分離した、韓国野生株SE49菌株、ST25菌株、SG53菌株、SP19菌株、SC7菌株及びSD3菌株で調査した。各菌株の振盪培養液OD600=2150μLを混合し、ΦCJ8溶液1010pfu/mL10μLをソフトアガーオーバーレイ方法で37°Cにて18時間培養し、溶菌斑形成の有無を観察した。バクテリオファージΦCJ8は、SE、ST、SG及びSPの全てに対して95の溶菌活性を示す。前記結果を表3に要約した。実施例12ΦCJ8の毒性評価サルモネラ症、サルモネラ食中毒、家禽チフス及び雛白痢の予防に安定して用いるために、前記バクテリオファージの毒性をinvivo評価した。毒性評価は単回経口用量で行った。本評価においては、ラットにΦCJ8を単回経口投与して急性毒性を調査し、ΦCJ8の概略の致死量を得た。特定病原体不在SPFの7週齢のラット雌雄それぞれ10匹を毒性試験の前日に絶食させた。投与当日に経口ゾンデを用いて1×1013pfuの濃度のΦCJ8を雌雄それぞれ5匹に経口投与し、対照群として残りの雌雄それぞれ5匹には20mMのTris-HClと2mMのMgCl2の混合溶液を経口投与し、経口投与4時間後に飼料給与を再開した。投与当日は投与30分後に観察を始め、4時間毎に観察した。その後、14日間は1日1回臨床徴候を観察して記録した。その結果、ΦCJ8の毒性による死亡個体及び毒性症状はなかった。前記結果を表4~6に示す。投与前並びに投与1日、3日、7日、10日及び14日後の体重変化を観察して記録した。図9に示すように、対照群と比較して、有意な体重変化は観察されなかった。前記結果はΦCJ8が食欲減少や体重変化の原因となるいかなる毒性反応も引き起こさないことを示すものである。また、剖検及び目視観察においても、明確な異常は見られなかった。よって、新規バクテリオファージΦCJ8には毒性がない。実施例13ΦCJ8の飼料添加剤としての効率ΦCJ8を家畜に飼料として使用する場合の安定性及びサルモネラに対する予防効果を調査するために、家畜の成長、臓器と筋肉の相対的重量を測定した。本実験においては、2日齢のロス種ブロイラー雄鶏平均体重41.4g320匹を供試し、5週間飼育した。これらは4つの処理群対照群:基本飼料,BP-1:基本飼料ΦCJ80.05,BP-2:基本飼料ΦCJ80.10,BP-3:基本飼料ΦCJ80.20に分けて8回繰り返し、完全乱塊法RCBDRandomizedCompletelyBlockDesignで10匹を1群として配置した。ここで、ΦCJ8の力価は109pfu/gであった。その後、実験はトウモロコシ大豆を基礎とした飼料で行い、2段階の飼料プログラムを用いた。段階Iにおいては、粗タンパク質含有量23.0、リジン含有量1.19を含む飼料を2週間与えた。段階IIにおいては、粗タンパク質含有量21.0、リジン含有量1.05を含む飼料を3週間与えた。他の全ての栄養素は韓国家畜飼養標準家禽,2007に適合するか、それ以上であった。その結果、5週間にわたる飼料内のΦCJ8の添加はブロイラーの成長に何らの悪影響も及ぼさなかった表7。肝臓、脾臓、腹部脂肪、胸の筋肉、脚の筋肉などの臓器と筋肉の相対的重量においても処理期間における有意な差は観察されなかった表8。これらの結果は、ΦCJ8を0.05~0.2の濃度で添加してもブロイラーの成長又は臓器及び筋肉の発達に悪影響を及ぼさないことを意味する。ブロイラーの雛の繁殖から5週間の持続的なΦCJ8の添加給与においても成長活動や臓器及び筋肉の発達などに悪影響を及ぼさず、ΦCJ8の安定性が確認された。これらの結果は、病原菌に対する特異的な殺菌活性ゆえにΦCJ8が給与された鶏肉の消費者において、サルモネラエンテリティディスによる食中毒を予防できることを示すものである。実施例14ΦCJ8のSE繁殖及び糞便排出に対する抑制効果ΦCJ8のサルモネラに対する予防又は治療の可能性を確認するために、その抑制効果をニワトリで測定した。効能評価は、厳格にサルモネラ制御が行われる養鶏農場の種鶏270匹を対象とした。1日齢産卵鶏270匹を3つの処理群及び陽性対照群1群当たり60匹、並びに陰性対照群30匹に分け、グループ別に隔離飼育した。前記3つのΦCJ8処理群には105、107、109pfu/kgの濃度のバクテリオファージΦCJ8を含む飼料をそれぞれ与え、陽性対照群及び陰性対照群には一般飼料を与えた。各処理群の60匹のうち30匹の雛にSEサルモネラエンテリティディス:5×107CFU/bird攻撃接種群を経口接種し、残りの30匹の雛接触感染群はSE接種した雛と同居飼育した。SE接種7日、14日及び21日後に、攻撃接種群及び接触感染群のそれぞれ10匹の雛の盲腸糞からSEを分離し、定量分析した。SE接種7日、14日及び21日後に、処理群と対照群の飼育施設の出入り口、床及び換気フィルターから試料を収集し、定量的なサルモネラ分離を比較した。SE接種7日、14日及び21日後に、陽性対照群に比べて、腸内のサルモネラの減少が、107及び109pfu/kgのΦCJ8を投与した接種群及び接触感染群において観察された。107及び109pfu/kgのΦCJ8を投与した接種群は、非投与群に比べて、SEによる環境汚染の減少を示し、これは本発明のバクテリオファージΦCJ8が環境へのSE排泄を抑制することを意味する。ΦCJ8投与はまた、接種群の腸内のSE増殖を抑制し、これは環境へのSE排泄の減少をもたらし、結果として、同居飼育された接触感染群へのSE繁殖を防止した。前記結果を図9及び図10に示す。"