トランスフォーミング増殖因子-βTGFβ阻害剤からなる、多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導促進剤。トランスフォーミング増殖因子-βTGFβ阻害剤が、TGFβ受容体阻害剤である請求項1に記載の多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導促進剤。TGFβ受容体阻害剤が、下記式1から3のいずれかの式で表される化合物からなるTGFβ受容体阻害剤である、請求項2に記載の多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導促進剤。下記式1から3のいずれかの式で表される化合物からなる、多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導促進剤。多能性幹細胞がヒト多能性幹細胞である、請求項1から4のいずれか1項に記載の多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導促進剤。多能性幹細胞が人工多能性幹細胞である、請求項1から5のいずれか1項に記載の多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導促進剤。下記式1から3のいずれかの式で表される化合物からなる、ヒト人工多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導促進剤。トランスフォーミング増殖因子-βTGFβ阻害剤を含む、多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導促進用組成物。トランスフォーミング増殖因子-βTGFβ阻害剤が、TGFβ受容体阻害剤である、請求項8に記載の多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導促進用組成物。TGFβ受容体阻害剤が下記式1から3のいずれかの式で表される化合物からなるTGFβ受容体阻害剤である、請求項9に記載の多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導促進用組成物。下記式1から3のいずれかの式で表される化合物を含む、多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導促進用組成物。多能性幹細胞がヒト多能性幹細胞である、請求項8から11のいずれか1項に記載の多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導促進用組成物。多能性幹細胞が人工多能性幹細胞である請求項8から12のいずれか1項に記載の多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導促進用組成物。下記式1から3のいずれかの式で表される化合物を含む、ヒト人工多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導促進用組成物。トランスフォーミング増殖因子-βTGFβ阻害剤を試薬として含む、多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導促進用試薬キット。トランスフォーミング増殖因子-βTGFβ阻害剤がTGFβ受容体阻害剤である、請求項15に記載の多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導促進用試薬キット。TGFβ受容体阻害剤が下記式1から3のいずれかの式で表される化合物からなるTGFβ受容体阻害剤である、請求項16に記載の多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導促進用試薬キット。下記式1から3のいずれかの式で表される化合物を試薬として含む、多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導促進用試薬キット。トランスフォーミング増殖因子-βTGFβ阻害剤の存在下で、多能性幹細胞を生体外で培養することを特徴とする、多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導方法。トランスフォーミング増殖因子-βTGFβ阻害剤がTGFβ受容体阻害剤である、請求項19に記載の多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導方法。TGFβ受容体阻害剤が下記式1から3のいずれかの式で表される化合物からなるTGFβ受容体阻害剤である、請求項20に記載の多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導方法。下記式1から3のいずれかの式で表される化合物の存在下で、多能性幹細胞を生体外で培養することを特徴とする、多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導方法。トランスフォーミング増殖因子-βTGFβ阻害剤および造血因子の存在下で、多能性幹細胞を生体外で培養することを特徴とする、多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導方法。トランスフォーミング増殖因子-βTGFβ阻害剤がTGFβ受容体阻害剤である、請求項23に記載の多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導方法。TGFβ受容体阻害剤が下記式1から3のいずれかの式で表される化合物からなるTGFβ受容体阻害剤である、請求項24に記載の多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導方法。下記式1から3のいずれかの式で表される化合物および造血因子の存在下で、多能性幹細胞を生体外で培養することを特徴とする、多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導方法。多能性幹細胞がヒト多能性幹細胞である、請求項19から26のいずれか1項に記載の多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導方法。多能性幹細胞が人工多能性幹細胞である、請求項19から27のいずれか1項に記載の多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導方法。下記式1から3のいずれかの式で表される化合物および造血因子の存在下で、ヒト人工多能性幹細胞を生体外で培養することを特徴とする、多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導方法。下記工程を含むヒト人工多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導方法:ヒト人工多能性幹細胞を、ヒト骨形成タンパク質4bonemorphogeneticprotein4;BMP4およびヒト塩基性線維芽細胞成長因子basicfibroblastgrowthfactor;bFGFを含む培地中で培養する工程、前記工程1で培養した細胞を、さらに下記式1から3のいずれかの式で表される化合物、ヒトBMP4およびヒトヒト血管内皮細胞増殖因子vascularendothelialgrowthfactor;VEGFを含む培地中で培養する工程、および前記工程2で培養した細胞を、さらに上記式1から3のいずれかの式で表される化合物、ヒトBMP4、ヒトVEGF、ヒトトロンボポイエチンthrombopoietinおよびヒト幹細胞因子stemcellfactorを含む培地中で培養する工程。請求項19から30のいずれか1項に記載の多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導方法により得られる細胞培養物。ヒトES細胞からの造血幹細胞分化誘導において、現在までに最も良好な結果が報告されている方法非特許文献3であっても、その効率は再生医療に応用するには未だ不十分である。また、報告されている方法は、造血のための微小環境を構築し得るマウス由来ストローマ細胞株の使用に依存している。異種動物由来のストローマ細胞株を利用して増幅したヒト造血幹細胞を移植することは異種移植に該当することとなり、この点は臨床応用を考える上で大きな問題となる。このため、ヒトiPSES細胞からの効率的な造血幹細胞分化誘導方法において異種動物由来ストローマ細胞株への依存の程度が少ない方法を確立していくことが望まれる。本発明の目的は、多能性幹細胞、特にヒト多能性幹細胞から長期骨髄再構築能を持つ造血幹細胞を効率的に分化誘導し、増幅する手段を提供することである。本発明者は上記目的を達成すべく、ヒトiPS細胞を用いて、ヒト多能性幹細胞から造血幹細胞への分化誘導、およびその増幅を促進する低分子化合物の探索を行った。その結果、SB431542と称されるTGFβ受容体阻害剤である低分子化合物4451Hイミダゾール2イルベンズアミド下記式1がヒトiPS細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞の分化誘導並びにその増幅を促進した。さらに、TGFβ受容体阻害剤であるSB525334と称される低分子化合物62tertブチル51Hイミダゾール4イルキノキサリン下記式2およびLY364947と称される低分子化合物431Hピラゾール4イルキノリン下記式3がいずれもヒトiPS細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞の分化誘導並びにその増幅を促進した。TGFβ受容体阻害剤はTGFβ受容体の作用を阻害することにより該受容体が介するTGFβの作用を抑制することから、TGFβの作用を阻害する化合物はTGFβ受容体阻害剤と同様にヒトiPS細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞の分化誘導並びにその増幅を促進し得ると考えることができる。本発明はこの知見を利用することにより完成したものである。すなわち、本発明は、1TGFβ阻害剤からなる、多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導促進剤に関する。また本発明は、2TGFβ阻害剤がTGFβ受容体阻害剤である、上記1の多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導促進剤に関する。さらに本発明は、3TGFβ受容体阻害剤が、上記式1から3のいずれかの式で表される化合物からなるTGFβ受容体阻害剤である、上記2の多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導促進剤に関する。さらにまた本発明は、4上記式1から3のいずれかの式で表される化合物からなる、多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導促進剤に関する。また本発明は、5多能性幹細胞がヒト多能性幹細胞である、上記1から4のいずれかの多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導促進剤に関する。さらに本発明は、6多能性幹細胞が人工多能性幹細胞である、上記1から5のいずれかの多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導促進剤に関する。さらにまた本発明は、7上記式1から3のいずれかの式で表される化合物からなる、ヒト人工多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導促進剤に関する。また本発明は、8TGFβ阻害剤を含む、多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導促進用組成物に関する。さらに本発明は、9TGFβ阻害剤がTGFβ受容体阻害剤である、上記8の多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導促進用組成物に関する。さらにまた本発明は、10TGFβ受容体阻害剤が上記式1から3のいずれかの式で表される化合物からなるTGFβ受容体阻害剤である、上記9の多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導促進用組成物に関する。また本発明は、11上記式1から3のいずれかの式で表される化合物を含む、多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導促進用組成物に関する。さらに本発明は、12多能性幹細胞がヒト多能性幹細胞である、上記8から11のいずれかの多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導促進用組成物に関する。さらにまた本発明は、13多能性幹細胞が人工多能性幹細胞である、上記8から12のいずれかの多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導促進用組成物に関する。また本発明は、14上記式1から3のいずれかの式で表される化合物を含む、ヒト人工多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導促進用組成物に関する。さらに本発明は、15TGFβ阻害剤を試薬として含む、多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導促進用試薬キットに関する。さらにまた本発明は、16TGFβ阻害剤がTGFβ受容体阻害剤である、上記15の多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導促進用試薬キットに関する。また本発明は、17TGFβ受容体阻害剤が上記式1から3のいずれかの式で表される化合物からなるTGFβ受容体阻害剤である、上記16の多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導促進用試薬キットに関する。さらに本発明は、18上記式1から3のいずれかの式で表される化合物を試薬として含む、多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導促進用試薬キットに関する。さらにまた本発明は、19TGFβ阻害剤の存在下で、多能性幹細胞を生体外で培養することを特徴とする、多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導方法に関する。また本発明は、20TGFβ阻害剤がTGFβ受容体阻害剤である、上記19の多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導方法に関する。さらに本発明は、21TGFβ受容体阻害剤が上記式1から3のいずれかの式で表される化合物からなるTGFβ受容体阻害剤である、上記20の多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導方法に関する。さらにまた本発明は、22上記式1から3のいずれかの式で表される化合物の存在下で、多能性幹細胞を生体外で培養することを特徴とする、多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導方法に関する。また本発明は、23TGFβ阻害剤および造血因子の存在下で、多能性幹細胞を生体外で培養することを特徴とする、多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導方法に関する。さらに本発明は、24TGFβ阻害剤がTGFβ受容体阻害剤である、上記23の多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導方法に関する。さらにまた本発明は、25TGFβ受容体阻害剤が上記式1から3のいずれかの式で表される化合物からなるTGFβ受容体阻害剤である、上記24の多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導方法に関する。また本発明は、26上記式1から3のいずれかの式で表される化合物および造血因子の存在下で、多能性幹細胞を生体外で培養することを特徴とする、多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導方法に関する。さらに本発明は、27多能性幹細胞がヒト多能性幹細胞である、上記19から26のいずれかの多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導方法に関する。さらにまた本発明は、28多能性幹細胞が人工多能性幹細胞である、上記19から27のいずれかの多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導方法に関する。また本発明は、29上記式1から3のいずれかの式で表される化合物および造血因子の存在下で、ヒト人工多能性幹細胞を生体外で培養することを特徴とする、多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導方法に関する。さらに本発明は、30下記工程を含むヒト人工多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導方法に関する:ヒト人工多能性幹細胞を、ヒト骨形成タンパク質4bonemorphogeneticprotein4;BMP4およびヒト塩基性線維芽細胞成長因子basicfibroblastgrowthfactor;bFGFを含む培地中で培養する工程、前記工程1で培養した細胞を、さらに上記式1から3のいずれかの式で表される化合物、ヒトBMP4およびヒト血管内皮細胞増殖因子vascularendothelialgrowthfactor;VEGFを含む培地中で培養する工程、および前記工程2で培養した細胞を、さらに上記式1から3のいずれかの式で表される化合物、ヒトBMP4、ヒトVEGF、ヒトTPOおよびヒトSCFを含む培地中で培養する工程。さらにまた本発明は、31上記19から30のいずれかの多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導方法により得られる細胞培養物に関する。本発明によれば、多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導促進剤、分化誘導促進用組成物、分化誘導促進用試薬キット、分化誘導方法、並びに該分化誘導方法により得られる細胞培養物を提供できる。本発明に係る薬剤、組成物、試薬キット、および方法により、長期骨髄再構築能を持つ成体型造血幹細胞を効率よく分化誘導することが可能である。本発明によれば、遺伝子導入などの煩雑な操作の必要がなく、培養液中にTGFβ阻害剤、例えばTGFβ受容体阻害剤である低分子化合物や抗TGFβ受容体抗体を添加するだけで多能性幹細胞からの造血幹細胞および/または造血前駆細胞の分化誘導の効率化が可能であり、分化誘導の効率化に加えて簡便性の点で本発明は従来の技術と比較して明らかな優位性を有する。また、本発明により、異種動物由来のストローマ細胞株を用いることなく造血幹細胞の分化誘導を実施し得る。現在、多能性幹細胞の維持培養にはマウス由来の支持細胞feedercellsが使用され、また従来の造血幹細胞および/または造血前駆細胞の分化誘導方法ではマウス由来のストローマ細胞が使用されるため、該多能性幹細胞から分化誘導した造血幹細胞には該維持培養時に使用した異種動物由来細胞および分化誘導時に使用する異種動物由来細胞の両方が混入する可能性がある。しかし、本発明に係る分化誘導方法においては異種動物由来細胞を使用しないので、得られる造血幹細胞への異種動物由来細胞の混入を低減することができ、臨床応用を考えた際に有用である。さらに、従来の技術との組み合わせが可能であり、従来技術の効率を更に向上することが期待される。本発明は、TGFβ阻害剤からなる、多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導促進剤に関する。また本発明は、TGFβ阻害剤を含む多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導促進用組成物に関する。さらに、本発明は、TGFβ阻害剤の存在下で、多能性幹細胞を生体外で培養することを特徴とする、多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導方法、並びに該方法により得られる細胞培養物に関する。本発明により、長期骨髄再構築能を持つ成体型造血幹細胞を多能性幹細胞から効率よく分化誘導することが可能である。すなわち本発明により、多能性幹細胞を材料として、造血幹細胞および/または造血前駆細胞を含む細胞集団を効率よく取得することができる。TGFβは、腎臓、骨髄、血小板などほぼすべての細胞で産生されるタンパク質であり、5種類のサブタイプβ1~β5が存在する。このうち哺乳類で見られるのはβ1~β3の3種類である。TGFβの主な作用は増殖抑制であり、上皮細胞、血管内皮細胞、血球細胞、リンパ球などの多くの細胞に対して、増殖抑制因子として作用する。一方、TGFβは骨芽細胞の増殖および間葉細胞の増殖やコラーゲン合成を促進することも知られている。また、TGFβが、ニッチと呼ばれる骨髄微小環境に存在する造血幹細胞の休眠状態に関与している可能性があることがマウスにおいて報告されている非特許文献6。細胞へのTGFβのこのような作用は、細胞膜上に発現するTGFβ受容体により媒介される。用語TGFβ阻害剤は、TGFβの作用を阻害する効果を有する化合物からなる薬剤を意味する。TGFβの作用は、TGFβが細胞表面上のTGFβ受容体と結合することによりTGFβ受容体から細胞内にシグナルが伝達され、その結果、細胞において発現される。したがって、TGFβの作用の阻害は、TGFβとTGFβ受容体との結合やTGFβ受容体を介して細胞内に生じるTGFβシグナル伝達経路を阻害することにより実施できる。すなわち、TGFβ阻害剤の範囲には、TGFβに作用してTGFβの作用を阻害する化合物、並びにTGFβ受容体および/またはTGFβシグナル伝達経路に作用してTGFβの作用を阻害する化合物などが包含される。TGFβ阻害剤として、TGFβ受容体阻害剤を好ましく例示できる。用語TGFβ受容体阻害剤は、TGFβ受容体および/またはTGFβシグナル伝達経路に作用してTGFβの作用を阻害する化合物からなる薬剤を意味する。用語TGFβ受容体阻害剤は、言い換えれば、TGFβ受容体の作用を阻害する効果を有する化合物からなる薬剤を意味する。TGFβ受容体の作用は、TGFβの結合により細胞内にシグナルを伝達してTGFβの作用を細胞において発現させることである。すなわち、TGFβ受容体の作用を阻害する効果を有する化合物は、TGFβ受容体が介するTGFβの作用を阻害する化合物ということができる。TGFβ受容体阻害剤には、TGFβ受容体自体に作用してTGFβ受容体の作用を阻害する化合物やTGFβシグナル伝達経路に作用してTGFβ受容体の作用を阻害する化合物が含まれる。用語TGFβの作用を阻害する効果は、阻害する前と比較して阻害した後にTGFβの作用を低下させる効果または消失させる効果を意味する。用語TGFβ受容体の作用を阻害する効果は、阻害する前と比較して阻害した後にTGFβ受容体の作用を低下させる効果または消失させる効果を意味する。用語化合物は、任意の化学物質または分子を意味し、低分子、ペプチド、タンパク質、抗体、ヌクレオチド、核酸などを包含するがこれら例示に限定されない。化合物は天然物または合成物であり得る。用語低分子は有機分子であって比較的分子量が小さいものをいい、通常、分子量が約1000以下のものをいう。TGFβ阻害剤として、SB431542と称されるTGFβ受容体阻害剤である低分子化合物4451Hイミダゾール2イルベンズアミド下記式1を好ましく例示できる。SB431542は、市販されており、容易に入手可能である。以下、本明細書において、この低分子化合物をSB431542と称することがある。TGFβ阻害剤としてさらに、SB525334と称されるTGFβ受容体阻害剤である低分子化合物62tertブチル51Hイミダゾール4イルキノキサリン下記式2を好ましく例示できる。SB525334は、市販されており、容易に入手可能である。以下、本明細書において、この低分子化合物をSB525334と称することがある。TGFβ阻害剤としてさらに、LY364947と称されるTGFβ受容体阻害剤である低分子化合物431Hピラゾール4イルキノリン下記式3を好ましく例示できる。LY364947は、市販されており、容易に入手可能である。以下、本明細書において、この低分子化合物をLY364947と称することがある。SB431542、SB525334、およびLY364947はいずれも、001μM~1000μM、好ましくは01μM~100μM、より好ましくは01μM~10μMで使用される。本化合物の濃度はこれら例示された濃度に限定されず、多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導を促進する濃度であればいずれの濃度でも使用できる。適当な濃度は、多能性幹細胞を培養して造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導を行う実験実施例1参照を使用し、該培養中に本化合物を様々な濃度で添加して分化誘導促進の程度を測定して分化誘導促進の程度が高い濃度を選択することにより容易に決定できる。TGFβ阻害剤としてまた、抗TGFβ抗体や抗TGFβ受容体抗体であってTGFβの作用を阻害する抗体を例示できる。抗TGFβ抗体や抗TGFβ受容体抗体は、抗原特異的な抗体であることが好ましい。抗TGFβ抗体は、TGFβに結合してTGFβ受容体との結合を阻害し、その結果、TGFβの作用を阻害する。抗TGFβ受容体抗体は、TGFβ受容体に結合してTGFβとの結合を阻害し、その結果、TGFβの作用を阻害する。抗TGFβ抗体および抗TGFβ受容体抗体は、それぞれTGFβおよびTGFβ受容体、あるいはそれらの一部分のアミノ酸配列からなるポリペプチドを抗原として使用して、自体公知の抗体作製法により取得できる。TGFβの作用を阻害する抗体の選択は、例えばTGFβを発現している細胞にTGFβを接触させてTGFβの作用を測定する実験系に被検抗体を添加し、TGFβの作用を阻害する効果を示す抗体を選択することにより実施できる。例えば、上皮細胞、血管内皮細胞、リンパ球、またはそれらの培養細胞株にTGFβを接触させて該細胞に対するTGFβの増殖抑制作用を測定する実験系に被検抗体を添加し、TGFβの細胞増殖抑制作用を阻害する効果を示す抗体を選択することにより実施できる。用語抗体は、免疫グロブリンまたはその一部を指し、抗原結合部位を含む任意のポリペプチドを包含する。用語抗原特異的な抗体とは、抗原タンパク質を強く認識して結合するが、該タンパク質とは別種のタンパク質に対する認識および結合が弱いか、認識および結合しない抗体を意味する。本明細書において用語抗体には、ポリクローナル抗体、モノクローナル抗体、単価抗体、多価抗体、ヒト化抗体、ヒト抗体、単鎖抗体、キメラ抗体、合成抗体、組み換え抗体、ハイブリッド抗体、変異抗体、およびCRDグラフト化接合抗体が包含される。抗体は、さらに、その免疫原性を減少するか、その抗原親和性を増大するか、その特異性を変更するか、または他の目的のために、修飾されたものであってもよい。用語多能性幹細胞は、本明細書中で用いられる場合、自分自身を複製する自己複製能と多分化能を共に有する細胞を意味する。用語多能性pluripotencyは、用語多分化能と互換可能に使用され、細胞の有する性質をいい、様々な組織や器官に属する細胞に分化し得る能力をいう。このように用語多能性は、複数の種類の細胞に分化し得る能力をいい、全ての種類の細胞に分化し得る能力を意味する用語全能性totipotencyの概念を包含するが、明確に区別する場合は、全能性と多能性は区別することができる。本発明において多能性幹細胞は、胚性幹細胞ES細胞または人工多能性幹細胞iPS細胞であり得る。ES細胞は、着床前の胚盤胞中の内部細胞塊から樹立された細胞株で、未分化状態を維持したまま培養することが可能であり、全ての種類の細胞に分化する全能性を有する。マウスES細胞は1981年に樹立され、ヒトES細胞も1998年に樹立されている。一方、iPS細胞は、体細胞へ数種類の遺伝子を導入することにより、ES細胞のように非常に多くの細胞に分化できる多能性と、分裂増殖を経ても多能性を維持できる自己複製能を持つ細胞であり、マウスiPS細胞およびヒトiPS細胞がそれぞれ2006年および2007年に作製されたことが報告されている特許文献1など。造血幹細胞や造血前駆細胞をヒトの再生医療に使用する場合、本発明で使用する多能性幹細胞はヒト多能性幹細胞であることが好ましい。また、再生医療にES細胞あるいはES細胞から分化誘導して得た細胞を使用する場合、ES細胞の樹立に関する倫理的問題や、ES細胞固有のヒト白血球抗原HLAが患者のHLAと異なると免疫的拒絶が生じるという問題がある。そのため、好ましくはこのような問題がないiPS細胞が使用される。iPS細胞として、ヒト成人皮膚繊維芽細胞にOCT4、SOX2、NANOG、およびcMycの各遺伝子を導入することにより樹立されたヒトiPS細胞を好ましく例示できる。本発明において使用される多能性幹細胞はこのような例示に限らず、造血幹細胞および/または造血前駆細胞に分化誘導し得る細胞であれば、どのような細胞でも使用できる。用語造血幹細胞は、白血球、赤血球、および血小板などの血液細胞に分化する多分化能と自己複製能を併有する細胞をいう。血液細胞は、多能性造血幹細胞から、造血幹細胞そして種々の造血前駆細胞を経て分化し形成される。成熟の進んだ血液細胞は、細胞内顆粒などの特徴によって形態的に識別できる。一方、造血幹細胞および造血前駆細胞のような未分化な造血細胞は形態的な特徴では識別できないため、それらの検出は、細胞マーカーを利用して行われる。造血幹細胞はCD34細胞であり得る。より好ましくは、造血幹細胞はCD34CD43細胞であり得る。また、CD34およびCD43以外にも、他の造血幹細胞マーカーの存在が知られている。造血幹細胞マーカーとして、CD38、HLADR、CD90、CD117、CD123、CD133が例示される。細胞マーカーとは、細胞マーカー陽性ともいい、細胞が該マーカーを発現していることを意味する。細胞マーカーとは、細胞マーカー陰性ともいい、細胞が該マーカーを発現していないことを意味する。多能性幹細胞から造血幹細胞への分化の確認は、多能性幹細胞から分化誘導された細胞の細胞マーカーを、フローサイトメトリー法などの自体公知の方法で測定することにより実施できる。また、多能性幹細胞から分化誘導された細胞から、特定の造血幹細胞マーカーを発現している造血幹細胞を、フローサイトメトリー法などの自体公知の方法で分離、精製することもできる。用語前駆細胞は、分化の方向性が決定されており、一部の細胞系譜に属する1系統あるいは複数系統の細胞を作り出す分化能力と、自己増殖能とを有し、終末分化していない細胞をいう。このような分化能力は、数種類の系統の細胞に分化できる複能性multipotency、2~3系統の血球に分化できる寡能性oligopotency、1つの系統の細胞に分化できる単能性unipotencyとに分類できる。用語造血前駆細胞は、造血幹細胞に由来する細胞であって、血液細胞に属する1系統あるいは複数系統の細胞を作り出す分化能力と、終末分化していない細胞をいう。造血前駆細胞は、2~3系統の血球に分化できる寡能性造血前駆細胞oligopotentprogenitorcells、1つの血球に分化が限定された単能性造血前駆細胞unipotentprogenitorcellsに分類することができる。造血前駆細胞は、骨髄系前駆細胞およびリンパ系前駆細胞に大別できる。骨髄系前駆細胞は、赤血球、好中球、単球、好酸球、好塩基球、マクロファージ、血小板、およびマスト細胞のそれぞれの前駆細胞に分化し、増殖成熟過程を経てそれぞれの成熟した細胞の集団を形成する。また、リンパ系前駆細胞は、T細胞、B細胞、NK細胞、およびNKT細胞などのそれぞれの前駆細胞に分化し、増殖成熟過程を経てそれぞれの成熟した細胞の集団を形成する。血小板の前駆細胞は巨核球や巨核芽球などと呼ばれ、また、赤血球の前駆細胞は赤芽球などと呼ばれる。これら各系統の前駆細胞は、自体公知の方法を用いて細胞マーカーを判別することにより分類することができる。例えば、骨髄系細胞のマーカーとしてCD13、単球及びマクロファージ系のマーカーとしてCD14、巨核球系マーカーとしてCD41、赤血球系マーカーとしてグリコホリン、B細胞系マーカーとしてCD19、T細胞系マーカーとしてCD3が知られている。さらに、造血前駆細胞は、自体公知のコロニー形成法で造血前駆細胞を培養することにより形成させたコロニーを構成する細胞の形態により、骨髄系前駆細胞コロニー形成単位CFUGEMM、顆粒球-マクロファージコロニー形成単位CFUGM、マクロファージコロニー形成単位CFUM、顆粒球コロニー形成単位CFUG、赤芽球コロニー形成単位CFUE、赤芽球バースト形成単位BFUE、巨核球コロニー形成単位CFUMK、赤血球巨核球前駆細胞EryMK、巨核球バースト形成単位BFUMK、好酸球コロニー形成単位CFUEO、好塩基球コロニー形成単位CFUBaso、マスト細胞コロニー形成単位CFUMastなどに対応する細胞に分類することができる。コロニーアッセイ法として、コロニー形成細胞アッセイcolonyformingunitcultureassay;CFCassayまたはCFUCを例示できる。用語造血幹細胞および/または造血前駆細胞は、造血幹細胞で構成される細胞集団、造血前駆細胞で構成される細胞集団、および造血幹細胞と造血前駆細胞とで構成される細胞集団のいずれをも含む。造血幹細胞および/または造血前駆細胞は、CD34陽性CD43陽性CD34CD43細胞の細胞集団であり得る。用語成体型造血幹細胞は、多能性幹細胞から分化誘導される細胞であり、成体骨髄における造血を長期に亘って構築できる造血幹細胞を意味する。成体骨髄に存在する造血幹細胞は、骨髄系前駆細胞およびリンパ系前駆細胞に分化し、さらに増殖成熟過程を経て成熟した血液細胞の集団を形成する。すなわち用語成体型造血幹細胞は、成体に投与された後に、自己複製を行いつつ、骨髄系前駆細胞およびリンパ系前駆細胞に分化し、成熟した血液細胞の集団の形成を長期に亘って維持することができる細胞を意味する。用語分化は、用語細胞分化と互換可能に使用され、1個の細胞の分裂に由来する娘細胞集団において形態的および機能的に変化して質的な差をもった2つ以上の種類の細胞が生じる現象をいう。分化により、細胞の役割に応じた特異性が確立していく。したがって、形態的および機能的に特別な特徴を検出できない細胞に由来する細胞集団が、特定のタンパク質の産生、ゲノム中の特定の遺伝子群の発現などの明確な特徴を示すに至る過程も分化に包含される。用語分化に対し、用語未分化は、形態的および機能的に質的な差を未だ持たず、分化能を有する細胞細胞の状態を意味する。用語分化誘導は、1個の細胞の分裂において、該細胞に由来する娘細胞集団が、形態的機能的に変化して質的な差をもった2つ以上の種類の細胞を含有するように、そのような変化をもたらすことをいう。分化誘導は、そのような変化をもたらす因子を標的細胞あるいは標的細胞群に作用させることにより実施することができる。因子は、所望の目的を達成することができる限りどのような物質であってもよく、例えば、タンパク質、ポリペプチド、オリゴペプチド、ペプチド、ポリヌクレオチド、オリゴヌクレオチド、ヌクレオチド、核酸、低分子などを挙げることができる。造血幹細胞および/または造血前駆細胞を多能性幹細胞から分化誘導することのできる因子は、造血幹細胞および/または造血前駆細胞の自己複製、増幅および分化の少なくとも1つを調節するサイトカインや増殖因子などのいわゆる造血因子であれば特に限定されずいずれも使用できる。具体的には、骨形成タンパク質4bonemorphogeneticprotein4;BMP4および塩基性線維芽細胞成長因子basicfibroblastgrowthfactor;bFGFなどの中胚葉誘導因子、血管内皮細胞増殖因子vascularendothelialgrowthfactor;VEGF、トロンボポイエチンthrombopoietin;TPOなどの血小板増殖因子、幹細胞因子stemcellfactor;SCF、FMS様チロシンキナーゼ3リガンドFMSliketyrosinekinase3Ligand;Flt3L、インターロイキン-6/可溶性インターロイキン-6受容体複合体IL6sIL6R、およびノッチリガンド以下、Notchリガンドと称するなどを例示できる。造血因子は単独で使用することができるが、組み合わせて使用することが好ましい。また、多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞を分化誘導する場合、使用する造血因子は多能性幹細胞が由来する種と同じ種由来のものであることが好ましい。すなわち、ヒト多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞を分化誘導する場合、好ましくはヒト由来の造血因子を使用することが適当である。用語分化誘導促進は、分化誘導を助けること、または、分化誘導の程度をより著しくさせることを意味する。分化誘導促進には、細胞分化の速度の促進、分化した細胞の増幅あるいは増殖の促進のいずれをも含む。分化した細胞とは、形態的および機能的に特別な特徴を獲得した細胞、例えば成熟した血液細胞およびそれらの前駆細胞のいずれをも意味する。用語増幅は、終末分化していないいわゆる未分化細胞、例えば多能性幹細胞、造血幹細胞、および造血前駆細胞などの数を増加させることをいう。本発明に係る多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導促進用組成物は、TGFβ阻害剤、好ましくはTGFβ受容体阻害剤、例えばSB431542、SB525334、およびLY364947、並びに抗TGFβ受容体抗体から選択されるいずれか1または2以上の化合物を有効成分として含む組成物であり得る。本発明に係る組成物は、有効成分の他に、適当な担体、例えば医薬用に許容される担体医薬用担体含むことができる。担体は、製剤の使用形態に応じて通常使用される、充填剤、増量剤、結合剤、付湿剤、崩壊剤、滑沢剤、希釈剤および賦形剤を例示できる。これらは得られる製剤の投与形態に応じて適宜選択して使用される。より具体的には、水、医薬的に許容される有機溶剤、コラーゲン、ポリビニルアルコール、ポリビニルピロリドン、カルボキシビニルポリマー、アルギン酸ナトリウム、水溶性デキストラン、カルボキシメチルスターチナトリウム、ペクチン、キサンタンガム、アラビアゴム、カゼイン、ゼラチン、寒天、グリセリン、プロピレングリコール、ポリエチレングリコール、ワセリン、パラフィン、ステアリルアルコール、ステアリン酸、ヒト血清アルブミン、マンニトール、ソルビトール、ラクトースを例示できる。これらは、本薬剤の剤形に応じて適宜1種類または2種類以上を組み合わせて使用される。その他、安定化剤、殺菌剤、緩衝剤、等張化剤、キレート剤、界面活性剤、およびpH調整剤などを適宜使用することもできる。安定化剤は、例えばヒト血清アルブミンや通常のLアミノ酸、糖類、セルロース誘導体を例示できる。Lアミノ酸は、特に限定はなく、例えばグリシン、システイン、グルタミン酸などのいずれでもよい。糖類も特に限定はなく、例えばグルコース、マンノース、ガラクトース、果糖などの単糖類、マンニトール、イノシトール、キシリトールなどの糖アルコール、ショ糖、マルトース、乳糖などの二糖類、デキストラン、ヒドロキシプロピルスターチ、コンドロイチン硫酸、ヒアルロン酸などの多糖類などおよびそれらの誘導体などのいずれでもよい。セルロース誘導体も特に限定はなく、メチルセルロース、エチルセルロース、ヒドロキシエチルセルロース、ヒドロキシプロピルセルロース、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、カルボキシメチルセルロースナトリウムなどのいずれでもよい。界面活性剤も特に限定はなく、イオン性界面活性剤および非イオン性界面活性剤のいずれも使用できる。界面活性剤には、例えばポリオキシエチレングリコールソルビタンアルキルエステル系、ポリオキシエチレンアルキルエーテル系、ソルビタンモノアシルエステル系、脂肪酸グリセリド系などが包含される。緩衝剤は、ホウ酸、リン酸、酢酸、クエン酸、εアミノカプロン酸、グルタミン酸および/またはそれらに対応する塩例えばそれらのナトリウム塩、カリウム塩、カルシウム塩、マグネシウム塩などのアルカリ金属塩やアルカリ土類金属塩を例示できる。等張化剤は、塩化ナトリウム、塩化カリウム、糖類、グリセリンを例示できる。キレート剤は、例えばエデト酸ナトリウム、クエン酸を例示できる。本発明に係る組成物は、その他、多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導または分化誘導促進に効果を示す活性成分をさらに含み得る。本発明に係る組成物は、このような活性成分の1種類または2種類以上を組み合わせて含むことができる。活性成分として公知の造血因子を挙げることができる。造血因子として上記の造血因子、好ましくはBMP4、bFGF、VEGF、TPO、およびSCFを例示できる。本発明に係る多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導促進剤あるいは分化誘導促進用組成物は、多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導促進用試薬キットの形態で提供することができる。本発明に係る分化誘導促進用試薬キットは、少なくとも造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導促進剤あるいは分化誘導促進用組成物を個別に包装された形態で含むことができる。本発明に係る試薬キットは、その他、造血幹細胞および/または造血前駆細胞の分化や増幅に作用する造血因子などの薬剤を個別に包装された形態でさらに含み得る。本発明に係る多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導促進剤あるいは分化誘導促進用組成物を生体に投与する場合、投与経路は、全身投与または局所投与のいずれも選択することができる。この場合、疾患、症状などに応じた適当な投与経路を選択する。本発明に係る薬剤は、経口経路および非経口経路のいずれによっても投与できる。非経口経路としては、通常の静脈内投与、動脈内投与の他、皮下、皮内、筋肉内などへの投与を挙げることができる。さらに、経粘膜投与または経皮投与を実施することができる。剤形は、特に限定されず、種々の剤形とすることができる。例えば、溶液製剤として使用できる他に、これを凍結乾燥化し保存し得る状態にした後、用時、水や生理的食塩水などを含む緩衝液などで溶解して適当な濃度に調製した後に使用することもできる。また本発明に係る薬剤は、持続性または徐放性剤形であってもよい。具体的には、経口投与のためには、錠剤、カプセル剤、散剤、顆粒剤、丸剤、液剤、乳剤、懸濁液、溶液剤、酒精剤、シロップ剤、エキス剤、エリキシル剤とすることができる。非経口剤としては、例えば、皮下注射剤、静脈内注射剤、筋肉内注射剤、腹腔内注射剤などの注射剤;経皮投与または貼付剤、軟膏またはローション;口腔内投与のための舌下剤、口腔貼付剤;ならびに経鼻投与のためのエアゾール剤;坐剤とすることができるが、これらには限定されない。これらの製剤は、製剤工程において通常用いられる公知の方法により製造することができる。経口用固形製剤を調製する場合は、上記有効成分に賦形剤、必要に応じて結合剤、崩壊剤、滑沢剤、着色剤、矯味剤、矯臭剤などを加えた後、常法により錠剤、被覆錠剤、顆粒剤、散剤、カプセル剤などを製造することができる。そのような添加剤としては、当該分野で一般的に使用されるものでよく、例えば、賦形剤としては、乳糖、白糖、塩化ナトリウム、ブドウ糖、デンプン、炭酸カルシウム、カオリン、微結晶セルロース、珪酸などを、結合剤としては、水、エタノール、プロパノール、単シロップ、ブドウ糖液、デンプン液、ゼラチン液、カルボキシメチルセルロース、ヒドロキシプロピルセルロース、ヒドロキシプロピルスターチ、メチルセルロース、エチルセルロース、シェラック、リン酸カルシウム、ポリビニルピロリドンなどを、崩壊剤としては乾燥デンプン、アルギン酸ナトリウム、カンテン末、炭酸水素ナトリウム、炭酸カルシウム、ラウリル硫酸ナトリウム、ステアリン酸モノグリセリド、乳糖などを、滑沢剤としては精製タルク、ステアリン酸塩、ホウ砂、ポリエチレングリコールなどを、矯味剤としては白糖、橙皮、クエン酸、酒石酸などを例示できる。経口用液体製剤を調製する場合は、上記有効成分に矯味剤、緩衝剤、安定化剤、矯臭剤などを加えて常法により内服液剤、シロップ剤、エリキシル剤などを製造することができる。この場合矯味剤としては上記に挙げられたもので良く、緩衝剤としてはクエン酸ナトリウムなどが、安定化剤としてはトラガント、アラビアゴム、ゼラチンなどを挙げることができる。注射剤を調製する場合は、上記有効成分にpH調節剤、緩衝剤、安定化剤、等張化剤、局所麻酔剤などを添加し、常法により皮下、筋肉内及び静脈内用注射剤を製造することができる。この場合のpH調節剤及び緩衝剤としてはクエン酸ナトリウム、酢酸ナトリウム、リン酸ナトリウムなどを挙げることができる。安定化剤としてはピロ亜硫酸ナトリウム、エチレンジアミン四酢酸EDTA、チオグリコール酸、チオ乳酸などを挙げることができる。局所麻酔剤としては塩酸プロカイン、塩酸リドカインなどを挙げることができる。等張化剤としては、塩化ナトリウム、ブドウ糖などが例示できる。本発明に係る多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導方法は、多能性幹細胞を生体外で培養することを特徴とする。用語生体外インビトロは、用語生体内インビボと対照をなす用語であり、生体から摘出または遊離された状態をいう。化合物の存在下で、多能性幹細胞を生体外で培養することは、該化合物を細胞培養液中に添加することにより実施できる。より詳しくは、本発明に係る多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導方法は、胚様体形成法による多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導において、TGFβ阻害剤を多能性幹細胞に作用させることが好ましい。すなわち本発明は、TGFβ阻害剤の存在下で、多能性幹細胞を胚様体形成法により培養することを特徴とする、多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導方法に関する。胚様体形成法とは、多能性幹細胞の未分化性を維持するのに必要なサイトカイン、増殖因子および支持細胞を取り除いて適当な培地で培養することにより、嚢胞性の構造を有し、その内部に外胚葉、内胚葉、および中胚葉のいずれの細胞系譜も包含する胚様体と呼ばれる細胞塊を形成させる方法である非特許文献7。胚様体形成法において適当な造血因子を存在させることにより、多能性幹細胞から形成された胚様体に含まれる中胚葉細胞から、造血幹細胞および/または造血前駆細胞を分化誘導することができる。すなわち、本発明は、TGFβ阻害剤および造血因子の存在下で、多能性幹細胞を生体外で培養することを特徴とする多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導方法であり得る。TGFβ阻害剤および造血因子の存在下での多能性幹細胞の培養は、まず適当な造血因子の存在下で培養する工程、およびその後上記化合物および造血因子の共存下で培養する工程を含むものであり得る。培養の工程は、多能性幹細胞を培養して造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導を行う実験実施例1参照を使用し、適当な造血因子やその組み合わせを選択することにより容易に決定できる。本発明に係る多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導方法は、より詳しくは、下記aからcの工程を含み得る:a多能性幹細胞を、BMP4およびbFGFを含む培地中で培養する工程、b前記工程aで培養した細胞を、さらにTGFβ受容体阻害剤、BMP4およびVEGFを含む培地中で培養する工程、およびc前記工程bで培養した細胞を、さらにTGFβ受容体阻害剤、BMP4、VEGF、TPOおよびSCFを含む培地中で培養する工程。ここで、上記分化誘導方法の工程bおよび工程cで使用されるTGFβ受容体阻害剤は、好ましくはSB431542、SB525334、およびLY36494から選択される1または2以上の化合物であり、工程bで使用されるTGFβ受容体阻害剤と工程cで使用されるTGFβ受容体阻害剤とは同一のものであっても別のものであっても良いが、好ましくは同一ものが使用される。本発明に係る多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導方法は、好ましくは下記1から3の工程を含むヒト人工多能性幹細胞からの造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導方法であり得る:1多能性幹細胞を、ヒトBMP4およびヒトbFGFを含む培地中で培養する工程、2前記工程1で培養した細胞を、さらにTGFβ受容体阻害剤、ヒトBMP4およびヒトVEGFを含む培地中で培養する工程、および3前記工程2で培養した細胞を、さらにTGFβ受容体阻害剤、ヒトBMP4、ヒトVEGF、ヒトTPOおよびヒトSCFを含む培地中で培養する工程。ここで、上記分化誘導方法の工程2および工程3で使用されるTGFβ受容体阻害剤は、好ましくはSB431542、SB525334、およびLY36494から選択される1または2以上の化合物であり、工程2で使用されるTGFβ受容体阻害剤と工程3で使用されるTGFβ受容体阻害剤とは同一のものであっても別のものであっても良いが、好ましくは同一ものが使用される。本発明に係る分化誘導方法において、多能性幹細胞を培養する期間は、多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化を誘導し得る期間であれば特に限定されない。適当な期間は、多能性幹細胞を本発明に係る分化誘導方法で培養して造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導を行う実験実施例1参照を行い、分化誘導の程度を測定して分化誘導の程度が高い期間を選択することにより容易に決定できる。本発明に係る分化誘導方法における適当な培養期間は、上記工程1について2日間、その後、上記工程2について4日間、さらに上記工程3について2日間から6日間、好ましくは2日間である。培養期間において、培養液は1日から2日に1回新たな培養液と交換することが好ましい。TGFβ受容体阻害剤を培養中に添加する期間は、培養開始日から培養最終日までであってよく、好ましくは培養開始日を0日として培養2日目から6日目まで、より好ましくは培養2日目から培養4日目までである。造血因子の濃度は、多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導を促進する濃度であればいずれの濃度でも使用できる。適当な濃度は、多能性幹細胞を培養して造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導を行う実験実施例1参照を使用し、該培養中に造血因子を様々な濃度で添加して分化誘導の程度を測定して分化誘導の程度が高い濃度を選択することにより容易に決定できる。造血因子の適当な濃度は、多能性幹細胞の種類および使用量によるが、例えばヒトBMP4は1ngmlから100ngml、ヒトbFGFは1ngmlから100ngml、ヒトVEGFは1ngmlから100ngml、ヒトTPOは2ngmlから200ngml、ヒトSCFは2ngmlから200ngmlであり得る。好ましくは、ヒトBMP4は10ngml、ヒトbFGFは10ngml、ヒトVEGFは10ngml、ヒトTPOは20ngml、ヒトSCFは20ngmlであることが適当である。本発明に係る分化誘導方法において培養する多能性幹細胞の濃度は、造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導が可能である限り特に限定されないが、約1×104~1×106mlが例示される。培養温度は約30~40°C、好ましくは37°Cであり得る。培養時の二酸化炭素濃度は約1~10、好ましくは約5が適当である。本発明に係る分化誘導方法に使用する培養培地は、通常の細胞培養用、特に哺乳動物細胞培養用の培地であれば特に限定されない。培養培地は、血清由来のウイルスやプリオンの混入を防ぐなどの目的で、無血清培地を使用することが好ましい。より好ましくは、造血幹細胞や造血前駆細胞などの中胚葉系幹細胞の培養に適した培養培地を用いることが適当である。具体的には、無血清完全合成培地であるmTeSRStemcellTechnologies社製を好ましく例示できる。本発明に係る分化誘導方法において、マトリゲルなどの細胞培養の基質や支持体となる物質を使用することがより好ましい。本発明に係る薬剤、組成物、および方法により、長期骨髄再構築能を持つ成体型造血幹細胞を効率よく分化誘導することが可能である。本発明に係る方法は、遺伝子導入などの煩雑な操作の必要がなく、培養液中にTGFβ阻害剤を添加するだけで多能性幹細胞からの造血幹細胞および/または造血前駆細胞の分化誘導の効率化が可能であり、分化誘導の効率化に加えて簡便性の点で従来の技術と比較してその有用性は明らかである。現在、多能性幹細胞の維持培養にはマウス由来の支持細胞feedercellsが使用され、また従来の造血幹細胞および/または造血前駆細胞の分化誘導方法ではマウス由来のストローマ細胞が使用されるため、該多能性幹細胞から分化誘導した造血幹細胞には該維持培養時に使用した異種動物由来細胞および分化誘導時に使用する異種動物由来細胞の両方が混入する可能性がある。しかし、本発明に係る分化誘導方法においては異種動物由来細胞を使用しないので、得られる造血幹細胞への異種動物由来細胞の混入を低減することができ、臨床応用を考えた際に有用である。本発明はまた、本発明に係る多能性幹細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導方法により得られる細胞培養物に関する。本発明に係る分化誘導方法により、造血幹細胞および/または造血前駆細胞を含む分画、すなわちCD34CD43細胞分画の著名な増加、コロニー形成能を示す細胞の増加、および多系統の細胞からなるGEMMコロニー顆粒球、赤血球、マクロファージおよび巨核球からなるコロニーを形成する未分化前駆細胞の割合の増加が認められた実施例1参照。本発明に係る細胞培養物は、このように、細胞マーカーCD34およびCD43を有する造血幹細胞および/または造血前駆細胞を含む。また、本発明に係る細胞培養物に含まれる造血幹細胞および/または造血前駆細胞には、GEMMコロニーを形成する未分化前駆細胞が多く含まれる。本発明に係る細胞培養物は、CD34CD43細胞分画の他、多能性幹細胞を含むものであり得る。本発明に係る細胞培養物からCD34CD43細胞を分離精製して得ることも可能である。細胞の分離精製は、例えば発現しているCD34およびCD43などの細胞マーカーを指標としてフローサイトメトリー法やパンニング法などの公知方法により実施できる。また、特定の種類の造血前駆細胞を、そのような造血前駆細胞に特有の細胞マーカーを指標として公知方法により分離することにより取得することも可能である。本発明に係る細胞培養物は、従来の分化誘導方法により得られたものと異なり、異種細胞の混入が低減されているという特徴を有する。したがって、本発明に係る細胞培養物は、造血系再生医療などの臨床応用において有用である。以下、実施例を示して本発明をより具体的に説明するが、本発明は以下に示す実施例によって何ら限定されるものではない。ヒトiPS細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞の分化誘導およびその増幅を促進する化合物を見出すべく、化合物の探索を行った。ヒトiPS細胞は、国立大学法人東京大学医科学研究所ステムセルバンクより供与されたiPS細胞を使用した。このiPS細胞は、ヒト成人皮膚繊維芽細胞にOCT4、SOX2、NANOG、およびcMycの各遺伝子を導入することにより樹立されたヒトiPS細胞である。iPS細胞の維持培養は、無血清完全合成培地であるmTeSRStemcellTechnologies社製を培養液として用い、3000rad3Gy放射線照射したマウス胚由来線維芽細胞MEFを支持細胞feedercellsとして用いて、継代することにより実施した。継代維持したiPS細胞からの造血系細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導は、胚様体EBを形成させる方法により実施した。分化誘導のための細胞培養は支持細胞を使用せずに行った。より詳しくは、まず、iPS細胞をACCUMAXMILLIPORE社製を用いて37°C、5CO2雰囲気下で3分間酵素処理し、単一細胞懸濁液とした。6cmディッシュあたり1×106個の単一細胞を5mlの培養液を用いてローテーション60回転分しながら37°C、5CO2雰囲気下で培養することでEBを形成し、分化誘導を行った。培養液は図1に示した通りに培養日数に応じて組成を変化させ、また、2日に一度新しいものに交換した。この際、化合物を培養開始2日目から4日目まで、または、2日目から6日目まで添加した。分化誘導後の細胞は、リン酸緩衝生理食塩水以下、PBSと略称するで洗浄後、025トリプシンで37°C、5CO2雰囲気下で10分間から15分間処理し、単一細胞懸濁液とした。単一細胞に解離しきれなかった細胞塊をメッシュで取り除いた後、フローサイトメーターによる細胞マーカーの解析、およびコロニーアッセイを行った。細胞マーカーの解析は、上記調製した単一細胞懸濁液を、蛍光色素標識したCD34抗体およびCD43抗体で抗体染色し、CD34および/またはCD43を発現している細胞の割合をFACSFluorescenceActivatedCellSorterを用いて測定することにより実施した。また、コロニーアッセイは、培養開始8日目にEBより調整した単一細胞懸濁液をメチルセルロース培地を用いて12日間培養し、形成された血液細胞コロニーの数と種類を調べることにより実施した。その結果、TGFβ受容体阻害剤SB431542がヒトiPS細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞の分化誘導および増幅を促進することを見出した。図2、図3、図4Aおよび図4Bに、サイトカイン存在下でiPS細胞を培養し、培養2日目から6日目まで10μMのSB431542を添加して分化誘導を行った結果を示す。SB431542処理により、化合物無処理のときと比較してCD34CD43細胞分画、すなわち造血幹細胞および/または造血前駆細胞を含む分画の約5倍の著明な増加を認めた図2、図3。また、SB431542処理により、コロニー形成能を示す細胞が約5倍に増加していることを認めた図4A。さらに、多系統の細胞からなるコロニーGEMMコロニー:顆粒球、赤血球、マクロファージおよび巨核球からなるコロニーを形成する未分化前駆細胞の割合が高くなること図4Bが明らかとなった。以上の結果より、TGFβ受容体を介してTGFβによって活性化されるシグナル伝達経路はヒトiPS細胞からの造血幹細胞および/または造血前駆細胞の分化を阻害するものと考えられ、TGFβあるいはTGFβによって活性化されるシグナル伝達経路の抑制は、ヒトiPS細胞からの造血幹細胞および/または造血前駆細胞の効率的な分化誘導および増幅に有用であると考えられる。また、この効果は、iPS細胞だけでなく、ES細胞などの多能性幹細胞でも同等であると考えることができる。ヒトiPS細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞の分化誘導およびその増幅を促進する化合物の探索をさらに行った。材料および方法は実施例1と同様の材料および方法を使用した。その結果、TGFβ受容体阻害剤SB525334およびLY364947がいずれもヒトiPS細胞から造血幹細胞および/または造血前駆細胞の分化誘導および増幅を促進することを見出した。図5に、サイトカイン存在下でiPS細胞を培養し、培養2日目から6日目まで1μMのSB525334または10μMのLY364947を添加して分化誘導を行った結果を示す。SB525334処理により、化合物無処理のときと比較してCD34CD43細胞分画、すなわち造血幹細胞および/または造血前駆細胞を含む分画の著明な増加を認めた図5。また、LY364947処理により、化合物無処理のときと比較してCD34CD43細胞分画は造血前駆細胞を含む分画の著明な増加を認めた図5。SB525334は少なくとも濃度011μM、LY364947は少なくとも濃度0310μMで誘導促進効果が観察された。SB431542以外のTGFβ受容体阻害剤であるSB525334およびLY364947がいずれも、ヒトiPS細胞からの造血幹細胞および/または造血前駆細胞の分化誘導および増幅を促進したことから、TGFβ受容体を介してTGFβによって活性化されるシグナル伝達経路がヒトiPS細胞からの造血幹細胞および/または造血前駆細胞の分化を阻害すること、TGFβあるいはTGFβによって活性化されるシグナル伝達経路の抑制は、ヒトiPS細胞からの造血幹細胞および/または造血前駆細胞の効率的な分化誘導および増幅に有用であることが確認された。TGFβ受容体阻害剤の、造血幹細胞および/または造血前駆細胞の分化誘導および増幅を促進する効果が、EBを用いた分化誘導法実施例1および2参照以外の分化誘導法においても得られるか検証した。継代維持したヒトES細胞KhES3を、マウス由来ストローマ細胞株10T12との共培養によって、造血系細胞および/または造血前駆細胞への分化誘導を実施した。より詳しくは、まず、ES細胞を025トリプシン100mMCaCl210KSRを用いて37°C、5CO2雰囲気下で7分間酵素処理し、コロニー懸濁液とした。この時、コロニーあたり約200細胞が含まれる程度の大きさになるようにコロニーを砕いた。その後、5×105個の10T12細胞をあらかじめ播いた10cmディッシュに2×105個分のES細胞コロニーを10mlの培養液を用いて37°C、5CO2雰囲気下で培養し、分化誘導を行った。培養液は培養日数に応じてサイトカイン組成を変化させ後述、培養4日目、8日目、10日目に新しいものに交換した。この際、化合物を培養開始4日目から8日目まで添加した。分化誘導後の細胞は、リン酸緩衝生理食塩水以下、PBSと略称するで洗浄後、025トリプシンで37°C、5CO2雰囲気下で10分間から15分間処理し、単一細胞懸濁液とした。単一細胞に解離しきれなかった細胞塊をメッシュで取り除いた後、フローサイトメーターによる細胞マーカーの解析を行った。細胞マーカーの解析は、上記調製した単一細胞懸濁液を、蛍光色素標識したCD34抗体およびCD43抗体で抗体染色し、CD34および/またはCD43を発現している細胞の割合をFACSFluorescenceActivatedCellSorterを用いて測定することにより実施した。培養液には培養08日目まではVEGF10ngml、BMP43ngml、Activin3ngml、8日目以降はVEGF10ngmlを添加した。VEGFは1020ngmlであり得る。他のサイトカインに関しては濃度の検討は行っていない。FACS解析の結果、LY364947を処理することにより造血幹細胞/造血前駆細胞を含む分画CD34CD43の著明な増加を認めた図6A。また、FACS解析で得られた造血幹細胞/造血前駆細胞を含む分画CD34CD43の割合と全細胞数をもとに造血幹細胞/造血前駆細胞を含む細胞CD34CD43の数を算出したところ、LY364947処理により約6倍の増殖を示した図6B。以上の結果から、TGFβ受容体阻害剤は、EBを用いた分化誘導法実施例1および2参照だけでなく、異種動物由来ストローマ細胞を用いた分化誘導法においても造血幹細胞の効率的な誘導および増殖に効果を示すことが判明した。すなわち、TGFβ受容体阻害剤は、使用する分化誘導方法に関らず、造血幹細胞の効率的な誘導および増殖を促進すると考えることができる。