定常期移行促進因子をコードする遺伝子が破壊されてなる酵母の遺伝子破壊株を用いた、エタノールの製造方法。定常期移行促進因子をコードする遺伝子がRIM15遺伝子、IGO1遺伝子及びIGO2遺伝子からなる群より選択される少なくとも一種である、請求項1に記載の製造方法。酵母が、実験室酵母、清酒酵母、ワイン酵母、ビール酵母、焼酎酵母、パン酵母及びバイオエタノール酵母からなる群より選択される少なくとも1種である、請求項1又は2に記載の製造方法。実験室酵母がBY4743株である、請求項3に記載の製造方法。バイオエタノール酵母がNCYC3233株である、請求項3に記載の製造方法。エタノールが清酒又はバイオエタノールである、請求項1~5のいずれか1項に記載の製造方法。酵母を用いたエタノール生産において、エタノール生産速度を上げることは、エタノール発酵の生産性を高めるために極めて重要である。しかしながら、エタノール生産速度の観点から、酵母の増殖期から定常期への切り換えに着目したという発想は従来には無く、しかも、定常期移行促進因子をコードするRIM15遺伝子に変異を導入することにより改変し、高発酵性を獲得した例も知られていない。本発明の課題は、酵母を用いて、生産性高くエタノールを製造する方法を提供することにある。本発明者らは、従来の知見から、酵母のエタノール発酵は増殖停止後の定常期でも継続するので、効率的なエタノール発酵のためには定常期移行が正常に行われ、発酵環境における酵母の寿命が長期間維持されることが必要であると考えた。そして、そのことを証明するために、RIM15遺伝子を破壊した形質転換酵母を用いて発酵試験を行い、遺伝子破壊がエタノール発酵に与える影響を解析したところ、意外なことに、RIM15遺伝子を破壊した形質転換酵母が著しく高い発酵性を示すことが判明した。これは、従来の知見から全く予想できない結果であった。そこで、本発明者らは、この現象は酵母のエタノール発酵性を改善させるために利用可能であると考え、RIM15遺伝子の破壊とエタノール発酵についてさらに詳細な研究を行うことにより、本発明を完成するに至った。すなわち、本発明の要旨は、定常期移行促進因子をコードする遺伝子が破壊されてなる酵母の遺伝子破壊株を用いた、エタノールの製造方法に関するものである。本発明により、酵母のエタノール発酵において、従来より顕著に速い生産速度でエタノールを生産することができる。本発明のエタノールの製造方法は、酵母を用いてエタノールを製造するものであって、定常期移行促進因子をコードする遺伝子、例えばRIM15遺伝子、IGO1遺伝子及びIGO2遺伝子の少なくとも一つの破壊株を用いることに大きな特徴を有する。RIM15遺伝子については、SGDのホームページに配列が記載されており、かかる配列に基づいて、PCRプライマーを設計して遺伝子破壊や部位特異的変異を行うことができる。例えば、RIM15を破壊するために用いるDNAのプライマーとしては、RIM15URA3Fw配列表の配列番号4、RIM15URA3Rv配列表の配列番号5等が例示される。本発明における酵母とは、サッカロミセス属に属するエタノール発酵に用いることのできる酵母であって、例えば、実験室酵母、清酒酵母、ワイン酵母、ビール酵母、焼酎酵母、パン酵母、及びバイオエタノール酵母が挙げられる。実験室酵母としては、サッカロミセスセレビシエに属するBY4743株が好ましい。バイオエタノール酵母としては、サッカロミセスセレビシエに属するNCYC3233株が好ましい。エタノールとしては、清酒又はバイオエタノールが挙げられる。本明細書において、破壊とは、破壊される遺伝子の機能を喪失させたり、失活させたりするような遺伝子操作のことをいい、目的遺伝子領域の全遺伝子を喪失させる遺伝子操作や正常な機能に必要な部位を欠失又は変異させる遺伝子操作のことをいう。具体的には、定常期移行促進因子をコードするRIM15遺伝子を全喪失させる遺伝子操作が例示される。かかる遺伝子操作を行う方法としては、特に限定はなく公知の方法を用いることができ、例えば、変異剤処理による突然変異、遺伝子工学を用いた遺伝子破壊、遺伝子工学を用いた部位特異的変異などが挙げられる。なお、本発明においては、自然突然変異により破壊が生じた遺伝子破壊株も用いることができる。なお、上記遺伝子操作を行う際には、アミノ酸などの栄養要求マーカーや、薬剤に対する耐性マーカーなどを選択マーカーとして使用してもよい。IGO1遺伝子及びIGO2遺伝子については、SGDのホームページに配列が記載されている。従って、上記で説明したようなRIM15遺伝子と同様の方法によって、このような遺伝子の破壊株を得ることができる。定常期移行促進因子をコードする遺伝子の破壊株の代表株としては、BY4743Δrim15株及びNCYC323327crim15Δ株が挙げられる。前者はEUROSCARFからY37281として入手可能であり、後者は独立行政法人製品評価技術基盤機構特許微生物寄託センターに、受託番号NITEP1017寄託日:2010年12月13日として寄託されている。さらに、IGO1遺伝子が破壊された破壊株の代表株としてはBY4743Δigo1株が、及びIGO2遺伝子が破壊された破壊株の代表株としてはBY4743Δigo2株が挙げられる。これらはEUROSCARFからY32055及びY37298としてそれぞれ入手可能である。所望の遺伝子破壊株が上記のような寄託機関に寄託されている場合、そのような寄託されている株を用いることができる。本発明のエタノールの製造方法は、上記で説明された酵母の遺伝子破壊株を用いて実施されるが、酵母が特定のものである以外は、公知の方法や条件を採用することができる。以下、本発明を実施例に基づいて説明するが、本発明はこれらの実施例等によりなんら制限されるものではない。実施例1サッカロミセスセレビシエBY4743株及びこれを親株としたRIM15遺伝子破壊株を用いた清酒製造試験を行った。なお、BY4743株、BY4743Δrim15株については、いずれもEUROSCARFから、それぞれY20000、Y37281として入手可能である。親株であるBY4743株とBY4743Δrim15株を用いて、以下に示す方法で清酒を製造した。掛米40g、麹米10g、水80mL、90乳酸178μL混合による一段仕込を実施した。掛米として精米歩合70のアルファー化米、麹米として精白歩合70の乾燥麹を用いた。各酵母は、YPD培地酵母エキス1、ペプトン2、ブドウ糖2含有において一晩振とう培養した後、滅菌蒸留水により洗浄し、酵母数が1×107cellsmLになるように仕込時に添加した。発酵温度は15°Cとした。仕込試験は各株について4回ずつ繰り返した。仕込後、発酵モニター装置アトー株式会社製ファーモグラフIIを用いて発酵に伴う二酸化炭素発生量を求め、各株について平均二酸化炭素発生量を算出した。結果を図1に示す。二酸化炭素発生速度のピーク値及び二酸化炭素総発生量について、親株と遺伝子破壊株における値の有意差検定も行った。さらに、仕込後20日目には、遠心分離によって回収した清酒におけるエタノール濃度を測定し、各株について平均エタノール濃度を算出した。また、得られた平均エタノール濃度について、親株と遺伝子破壊株における濃度の有意差検定も行った。なお、エタノール濃度の測定は、株式会社島津製作所製ガスクロマトグラフGC17Aを用いて行った。RIM15遺伝子破壊株は、親株に比べて発酵に伴う二酸化炭素発生速度のピーク値が大きく親株:147±08mg30min、RIM15遺伝子破壊株:205±07mg30min、01未満の危険率で有意に親株より大きい、二酸化炭素総発生量の値も大きかった親株:560±000g、RIM15遺伝子破壊株:1007±024g、01未満の危険率で有意に親株より大きい。さらに、最終的なエタノール濃度も、親株が112±03であるのに対し、RIM15遺伝子破壊株が170±02と著しく高い01未満の危険率で有意に親株より高いことから、RIM15遺伝子破壊株を用いた場合、エタノール発酵速度が速く、エタノール生産性に優れることが分かった。実施例2上述のサッカロミセスセレビシエBY4743株及びBY4743Δrim15株を用いてエタノール発酵試験を実施した。高濃度ブドウ糖含有YPD培地酵母エキス1、ペプトン2、ブドウ糖20含有50mLを用いたエタノール発酵試験を実施した。各酵母は、YPD培地において一晩振とう培養した後、酵母密度がOD66001mLになるように高濃度ブドウ糖含有YPD培地に添加し、5日間静置培養した。発酵温度は30°Cとした。発酵試験は各株について4回ずつ繰り返した。培養開始後、発酵モニター装置アトー株式会社製ファーモグラフIIを用いて発酵に伴う二酸化炭素発生量を求め、各株について平均二酸化炭素発生量を算出した。結果を図2に示す。二酸化炭素発生速度のピーク値及び二酸化炭素総発生量については、親株と遺伝子破壊株における値の有意差検定も行った。RIM15遺伝子破壊株は、親株に比べて発酵に伴う二酸化炭素発生速度のピーク値が大きく親株:113±15mg15min、RIM15遺伝子破壊株:163±27mg15min、5未満の危険率で有意に親株より大きい二酸化炭素総発生量の値も大きいことから親株:274±013g、RIM15遺伝子破壊株:323±021g、01未満の危険率で有意に親株より大きい、RIM15遺伝子破壊株を用いた場合、エタノール発酵速度が速く、エタノール生産性に優れることが分かった。実施例3サッカロミセスセレビシエBY4743株、並びにこれを親株としたIGO1遺伝子破壊株及びIGO2遺伝子破壊株のそれぞれを用いたエタノール発酵試験を行った。なお、BY4743株、BY4743Δigo1株、BY4743Δigo2株については、いずれもEUROSCARFから、それぞれY20000、Y32055、Y37298として入手可能である。実施例2と同じ条件でエタノール発酵試験を行い、各株について3回ずつ繰り返した。培養開始後、発酵モニター装置アトー株式会社製ファーモグラフIIを用いて発酵に伴う二酸化炭素発生量を求め、各株について平均二酸化炭素発生量を算出した。結果を図3に示す。二酸化炭素発生速度のピーク値については、親株と遺伝子破壊株における値の有意差検定も行った。IGO1遺伝子破壊株及びIGO2遺伝子破壊株は、親株に比べて発酵に伴う二酸化炭素発生速度のピーク値が大きく親株:301±38mg6h、IGO1遺伝子破壊株:359±23mg6h、IGO2遺伝子破壊株:420±71mg6h、5未満の危険率で有意に親株より大きい二酸化炭素総発生量の値も大きいことから親株:306±028g、IGO1遺伝子破壊株:341±013g、IGO2遺伝子破壊株:355±008g、IGO1遺伝子破壊株及びIGO2遺伝子破壊株を用いた場合、エタノール発酵速度が速く、エタノール生産性に優れることが分かった。実施例2及び3の結果は、定常期移行促進因子をコードする遺伝子が破壊された酵母の遺伝子破壊株が優れたエタノール生産性を発揮することを強く示唆する。実施例4サッカロミセスセレビシエ二倍体バイオエタノール酵母NCYC3233株由来の一倍体ウラシル要求性株を親株としてRIM15遺伝子の破壊株を作成し、エタノール製造試験を行った。なお、NCYC3233株は、NCYCより入手可能である。NCYC3233一倍体株の作成まず、遺伝子操作を容易にするために、二倍体として知られるNCYC3233株由来の一倍体株を作成した。NCYC3233株をYPD寒天培地にて30°Cで一晩培養後、胞子形成寒天培地酢酸カリウム1含有に菌体を移し、30°Cで約3日間培養することにより、一倍体胞子の形成を誘導した。顕微鏡にて胞子形成を確認した後、マイクロマニピュレータを用いて胞子分離を行った。MAT遺伝子座のPCR及びフローサイトメトリーによるDNA含量解析により、正常な一倍体が得られたことを確認した。このうち、増殖が良好な1株を選抜し、NCYC323327c株と命名した。この株は、独立行政法人製品評価技術基盤機構特許微生物寄託センターに、受託番号NITEP1061寄託日:2011年1月19日として寄託された。NCYC3233一倍体ウラシル要求性株の作成次に、得られた一倍体株を宿主として、選択マーカーとしてウラシル要求性を付与した。本例では、ウラシル要求性を付与するため、ウラシル合成に必須なURA3遺伝子のORF領域を完全に欠失したura3Δ0アレルを有する実験室酵母BY4743株のゲノムDNAを鋳型としたPCRによってURA3遺伝子破壊用DNA断片を作成した。具体的には、プライマーURA3Fw配列表の配列番号1及びURA3下流Rv配列表の配列番号2を用いてPCRを行い、BY4743株のura3Δ0アレルを増幅した。このPCR産物を用いてNCYC323327c株を形質転換し、5FOA含有寒天培地yeastnitrogenbasewithoutaminoacids067、completesupplementmixture079gL、5FOA01、ブドウ糖2含有で増殖するコロニーを選抜した。これらの各コロニーからゲノムDNAを抽出し、プライマーURA3Fw及びURA3下流Rvを用いてPCRを行い、得られた産物のサイズを測定することによって、URA3遺伝子が破壊されていることを確認した。このうちURA3遺伝子破壊が確認された株については、SDUra寒天培地yeastnitrogenbasewithoutaminoacids067、completesupplementmixtureminusuracil077gL、ブドウ糖2含有での生育を調べ、ウラシル要求性の表現型を示すことを確認した。この株は、NCYC323327cura3Δ0株と命名され、独立行政法人製品評価技術基盤機構特許微生物寄託センターに、受託番号NITEP1016寄託日:2010年12月13日として寄託された。RIM15遺伝子破壊株の作成RIM15遺伝子の破壊は、URA3マーカー遺伝子をRIM15遺伝子のORF領域と置換することにより行った。具体的には、まず、URA3遺伝子を有するサッカロミセスセレビシエのゲノムを鋳型として、プライマーURA3上流Fw配列表の配列番号3及びURA3下流Rvを用いてPCRを行い、URA3遺伝子のORF領域の全長を含むDNA断片を増幅した。次に、このPCR産物を鋳型として、プライマーRIM15URA3Fw配列表の配列番号4及びRIM15URA3Rv配列表の配列番号5を用いてPCRを行い、マーカーであるURA3の両側に、RIM15のORFに隣接する上流部分及び下流部分のDNA配列を持つ遺伝子破壊用DNA断片を作成した。このPCR産物を用いてNCYC323327cura3Δ0株を形質転換し、SDUra寒天培地で増殖するコロニーを選抜した。これらの各コロニーからゲノムDNAを抽出し、プライマーRIM15上流Fw配列表の配列番号6及びURA3ORFRv配列表の配列番号7を用いてPCRを行い、得られた産物のサイズを測定することによって、RIM15遺伝子が破壊されていることを確認した。この株は、NCYC323327crim15Δ株と命名され、独立行政法人製品評価技術基盤機構特許微生物寄託センターに、受託番号NITEP1017寄託日:2010年12月13日として寄託された。エタノールの製造バイオエタノール酵母由来一倍体株である親株NCYC323327c株と、上記で得られたRIM15遺伝子破壊株であるNCYC323327crim15Δ株を用いて、以下に示す方法でエタノールを製造した。廃糖蜜培地ケーンモラセス原液を蒸留水にてBrix248に調整後、0025硫酸アンモニウムを添加したもの50mLを用いたエタノール発酵試験を実施した。各酵母は、YPD培地において一晩振とう培養した後、滅菌蒸留水により洗浄し、酵母密度がOD66001mLになるように両培地に添加し、54時間振とう培養した。発酵温度は35°Cとした。発酵試験は各株について4回繰り返した。培養開始後、発酵モニター装置アトー株式会社製ファーモグラフIIを用いて発酵に伴う二酸化炭素発生量を求め、各株について平均二酸化炭素発生量を算出した。二酸化炭素発生速度が0となった時点を発酵終了とした。各時点における二酸化炭素発生速度及びそのピーク値について、親株と遺伝子破壊株における値の有意差検定も行った。また、培養開始から12、24、30、36、54時間後には、遠心分離によって回収した培養液上清におけるエタノール濃度を測定し、各株について平均エタノール濃度及び標準偏差を算出した。また、得られた平均エタノール濃度について、親株と遺伝子破壊株における濃度の有意差検定も行った。なお、エタノール濃度の測定は、株式会社島津製作所製ガスクロマトグラフGC17Aを用いて行った。結果を図4に示す。RIM15遺伝子破壊株は、発酵初期には親株と同様の二酸化炭素発生速度を示すが、二酸化炭素発生速度のピーク値が親株より大きく親株:1083±16mLh、RIM15遺伝子破壊株:1139±37mLh、5未満の危険率で有意に親株より大きい、ピーク値からの急激な二酸化炭素発生速度減少が抑えられていた16~30時間においてはRIM15遺伝子破壊株の二酸化炭素発生速度が5未満の危険率で有意に親株より大きい。さらに、トータルで発酵終了までにかかる時間が短いことから親株:533±08時間、RIM15遺伝子破壊株:438±07時間、01未満の危険率で有意に親株より短い、RIM15遺伝子破壊株を用いた場合、エタノール発酵速度が速く、エタノール生産性に優れることが分かった。エタノール濃度について平均値の差の検定を行った結果、培養開始24、30、36時間後において、RIM15遺伝子破壊株は親株と比較して01未満の危険率で有意にエタノール濃度が高いことから親株:604±006vol24時間後/724±003vol30時間後/823±006vol36時間後、RIM15遺伝子破壊株:680±006vol24時間後/836±005vol30時間後/916±007vol36時間後、エタノール発酵速度が速く、エタノール生産性に優れることが確認された。