"凍結保存のプロセスにおいて生体物質を操作し、生体物質を装填する装填部2aを具備する装置1において、-長さに沿って、内部の少なくとも一部を通して流路Cが画定されており、前記流路Cが、インサイチュでの加温のために、内部に加温液Wを導通させ、かつ前記装填部2aに装填されている前記生体物質に前記加温液Wを付与するように配置されている、細長いハンドル部5と、-端部4aが閉鎖され、かつ口4bを有する容器4であり、-前記細長いハンドル部5に、前記細長いハンドル部5を前記容器口4bから導入することによって着脱可能に結合され、結合されると、内部の空気が前記口4bを介して逃げることができないように、少なくとも前記装填部2aを覆い、-結合されると、内部空気が内部空気の逆圧によって前記加温液Wを前記容器口4bに向かって押すことなく、前記付与された加温液と、前記付与された加温液Wによって加温されかつ前記装填部2aから離れるように押し流される前記生体物質との両方を受け取るように配置され、寸法が決められ、かつ構成されている容器4と、をさらに具備することを特徴とする装置1。請求項1に記載の装置において、前記容器4が、気体に対して透過性であり液体に対して不透過性である多孔性材料からなる栓7によって前記端部4aが閉鎖されるカバーストローであり、それにより、前記加温液Wが前記容器4内に導入されているとき、内部空気が前記栓7を介して逃げて、前記内部空気の逆圧を生成しないように、前記加温液Wが内部空気の先の空間を占有することができるようにすることを特徴とする装置。請求項2に記載の装置において、前記栓7がまた、前記加温液Wによって湿潤すると液体を浸透させない第2材料からなり、それにより、前記容器4が前記細長いハンドル部5から分離されると摺動することによって、前記容器の中身を前記口4bから押し出すことができるプランジャとなり、前記プランジャが、外部作動手段によって押されることを特徴とする装置。請求項3に記載の装置において、前記カバーストローが精液ストローであることを特徴とする装置。請求項1に記載の装置において、前記容器4が多孔性材料からなるカバーストローであり、それにより、前記加温液Wが前記容器4内に導入されているとき、内部空気が前記カバーストローの壁を通して逃げて、前記内部空気の逆圧を生成しないように、前記加温液Wが内部空気の先の場所を占有することができるようにすることができることを特徴とする装置。請求項1に記載の装置において、前記容器4が、断面寸法の異なる2つの部分、すなわち、前記口4bを含む第1部分4p1と断面寸法がより広い第2部分4p2とを有し、前記2つの部分4p1、4p2の断面寸法の間の寸法比により、前記加温液Wが滴ることにより前記容器4に入り、前記第2部分4p2の底部に沈殿し、前記細長いハンドル部5を取り出しているときであっても、内部空気の逆圧によって前記容器口4bに向かって押し出されないことが可能になることを特徴とする装置。請求項1に記載の装置において、前記装填部2aが、前記細長いハンドル部5の第1端5aに配置された取付支持体2の一部であり、前記内部流路Cが、前記取付支持体2に向かって面している出口Csを有することを特徴とする装置。請求項7に記載の装置において、前記内部流路Cが、前記細長いハンドル部5の第2端5bにおいて入口Ciを有することを特徴とする装置。請求項8に記載の装置において、前記細長いハンドル部5の前記第2端5bが、前記流路入口Ciを加温液源の出口に接続するコネクタ6を備えることを特徴とする装置。凍結保存のプロセスにおいて生体物質を操作する装置の使用において、装置装填部に装填された凍結保存された生体物質を、加温液を導通させかつ前記装置装填部に装填された前記生体物質に付与することにより、同時に加温しかつ移送することを含むことを特徴とする使用。請求項10に記載の使用において、前記装置の内部流路に前記加温液を導通させることを行うことを含むことを特徴とする使用。請求項10または11に記載の使用において、前記内部流路を画定する前記容器のハンドル部から前記装置の容器まで前記移送を行うことを含むことを特徴とする使用。請求項12に記載の使用において、前記容器から最終標的まで第2移送を行うことを含むことを特徴とする使用。請求項10乃至13の何れか一項に記載の使用において、前記生体物質が、卵母細胞、胚、細胞および組織を含む群から選択された生体物質またはそのサンプルであることを特徴とする使用。請求項10乃至14の何れか一項に記載の使用において、前記凍結保存がガラス化技法によって行われることを特徴とする使用。請求項10乃至15の何れか一項に記載の使用において、前記装置が、請求項1~9のいずれか一項に記載の装置であることを特徴とする使用。本発明の第1態様によって提供される装置1は、ハンドル部5を備え、ハンドル部5は、図1~図7および図9~図11に示す実施形態では、その全長を通して内部長手方向流路C図1~図3および図7に示すが画定されており、流路Cは、インサイチュでの加温のために、その中に加温液図13および図14におけるWを導通させるように、かつ装填部2aに装填されている生体物質図示せずの上に加温液を付与するように配置されている。図1~図7、図9および図11に示すように、装置1の装填部2aは、図示する実施形態では、前記細長い本体5の第1端5aに配置された取付支持体2の第1端部である。取付支持体2に対する3つの異なる実施形態を添付の図に示し、1つの実施形態は、図4および図5に詳細に示されており、取付支持体2が薄い平面フィルムであり、別の実施形態は、図6aに示されており、取付支持体2がリングの形態の先端2aを有し、第3の実施形態は、図6bに示されており、取付支持体2がループの形態の先端2aを有している。図1~図3ならびに図4および図5に特に示すように、内部流路Cは、その内部を循環する加温液を、装填部2aに装填された生体物質に向けるために、取付支持体2に向かって面している出口Csを有している。図4および図5に示す実施形態では、取付支持体2の部分2bの側縁を、自由端に向かって断面が低減している、面しているU字型輪郭のアームb1、b2図4を参照内に、かつU字型輪郭アームb1、b2のそれぞれの内側に面する壁に長手方向に画定されている2つのそれぞれの溝穴R図3および図5には一方のみを図示する内に、案内されるように導入しかつ移動させる図4および図5に矢印によって示すことによって、前記取付支持体2は、細長い本体5すなわち細長いハンドル部5の前記第1端5aに着脱可能に結合される。前記内側に面する壁の一方のみ、特に図5に参照記号b1wによって示すもののみを図示している。図4および図5に示す実施形態では、取付支持体2は、上記段落に説明したように細長い本体5に結合され、貫通開口部Aの一部を覆い、貫通開口部Aは、図4において、取付支持体2が細長い本体5に結合される前、その最大寸法で示されており、図2において、取付支持体2が細長い本体5に、溝穴Rの端部まで完全には導入されずに結合されると、その最小寸法で示されている。図12aおよび図12bは、図4および図5によって示すものに対する代替実施形態を示し、そこでは、装置1は、図4および図5のものとは異なる細長いハンドル部5の第1端5aへの取付支持体の結合手段を含む。前記結合手段は、取付支持体2の部分2bに、貫通穴13aによって形成される結合構造を備え、その貫通穴13a内に、細長いハンドル部5の第1端5aの一致する結合構造のそれぞれの突起が入りかつ適合し、前記突起13bは、アクセス溝穴13rから前記穴13aに、前記アクセス溝穴13rの境界を定める部分2bの材料を弾性的に変形させることによって入る。図示する実施形態では、生体物質を、装填部2aの2つの側部のいずれにも装填することができ、それは、図5に示すように、取付支持体が、流路Cの対称長手方向軸に、すなわち出口Csの中心に配置されており、そのため、出口Cs図4および図5を参照から出る加温液図13および図14におけるWが、前記2つの側部の両方に沿って、かつ図2に示す開口部Aを通って流れるためである。しかしながら、さらなる実施形態図示せずでは、生体物質を、支持体の面の一方に装填することも可能であり、それにより、前記支持体を、対称長手方向軸からシフトさせることができ、支持体は、何らかの溝穴状方法によるか、またはハンドル自体の一部であることによりハンドルに取り付けられる。図10および図11に示す実施形態によれば、装置1は、カバーストロー4をさらに備え、それは、綿プランジャ7によって端部が閉鎖され、図10に示すように細長い本体5に結合され、すなわち細長い本体5の長さの大部分を覆い、したがって、細長い本体5を機械的損傷から保護するとともに、そこに装填される生体物質を保護する。先のセクションで説明したように、前記カバーストロー4は、付与される加温液の体積すべてを、その中に懸濁している生体物質とともに受け取りかつ保持するように寸法が決められ、また、授精カテーテル内に挿入されるように、かつ内部に収容されている生体物質を動物の子宮に移植するために用いられるようにも提供される。図1、図2および図3に示すように、内部流路Cは、コネクタ6によって、加温液源の出口に接続された細長い本体5の第2端5bに、入口Ciを有している。図10および図11に示す実施形態では、前記加温液源はシリンジ8であり、それは、コネクタ6内にその先端を導入し、その中身を内部流路C内に押し込むことによって使用される。図9は、加温液源が、コネクタ6に接続されたLUER-Lockピペット3を含む、別の実施形態を示す。図13は、上述した実施形態に対する本発明の第1態様の装置を示し、そこでは、容器4は精液ストローであり、装置は、生体物質図示せずをシリンジ8によって前記精液ストロー4の内部に移送するために使用されている。特に、図13の図において、前記シリンジ8の排出ポートは、細長いハンドル部5の挿入コネクタ6に結合され、精液ストロー4は、ハンドル部5に、ハンドル部5をストロー口4bから導入することによって結合され、前記結合により、空気が前記口4bを介してカバーストロー4内部から逃げることができなくなる。図13の一連の画像を参照すると、図bにおいて、シリンジ8のプランジャが押し込まれており、それにより、その中身、すなわち押し流される生体物質図示せずとともに加温液Wがカバーストロー4に入り、内部の空気図示せずを押して、多孔性栓7を介してストロー4から逃し、それによりその空気の先の場所を占有する。図13の図cでは、シリンジ8は、細長いハンドル部5から切り離されかつ引き抜かれており、図dでは、細長いハンドル部5は、カバーストロー4から取り出され、内部に生体物質が懸濁している加温液Wは、それをカバーストロー4から押し出す可能性があるいかなる空気の逆圧も存在しないため、カバーストロー4内に残る。図14は、カバーストローの代りに、容器4が、断面寸法の異なる2つの部分、すなわち容器口4bを含む第1の部分4p1およびより断面寸法の広い第2の部分4p2を有する小さい瓶である、代替実施形態を示す。この場合、瓶4内への加温液Wの導入もまた、図14の図a~dの順序に従って、シリンジ8から行われる。図bでは、シリンジ8のプランジャは押されており、それにより、その中身、すなわち押し流される生体物質図示せずとともに加温液Wは、滴ることにより瓶4に入り図bを参照、第2部分4p2の底部に沈殿し図b、図cおよび図dを参照、わずかな内部空気の逆圧が生成される場合であってもそこに残り、それは、そうした逆圧が、部分4p1および4p2の断面の寸法比のために、沈殿した加温液Wを容器口4bに向かって決して押すことがないためである。図14の図cでは、シリンジ8は、細長いハンドル部5から切り離されかつ引き抜かれており、図dでは、細長いハンドル部5は、瓶4から取り出され、生体物質が懸濁している加温液Wは、いかなる空気の逆圧もそれを口4bに向かって押し出さないため、瓶4の底部に残っている。次に、本発明によって提供される装置および使用の長所を試験するために、本発明者によって行われた研究について開示する。体外胚生産と殺された思春期前の仔牛およびウシから卵巣を収集し、1時間~2時間以内におよそ37°Cの生理食塩水で実験室まで移送した。5mLシリンジが取り付けられた20g針を用いて小胞の吸引により、胚を取得した。顆粒膜細胞の少なくとも2つの層によって包囲され均一に顆粒化した細胞質を含む卵胞卵を、体外成熟IVMのために選択した。成熟に使用した培養液は、10v/vウシ胎児血清FCS、10ngmL-1上皮成長因子および50μgmL-1ゲンタマイシンが補充されたTCM-199であった。胚を、24時間、38.5°Cの加湿した5CO2空気雰囲気内で、4ウェルプレートにおいて500μLの培養液で培養した。成熟に続き、COCを、ウェル毎に250μlの受精培地を含む4ウェルプレートに最大50の群で移植する前に、PBSにおいて4回、その後、受精培地25mMの重炭酸ソーダ、22mMの乳酸ナトリウム、1mMのピルビン酸ナトリウムおよび6mgmL-1の脂肪酸フリーBSAおよび10mgmL-1のヘパリンナトリウム塩を含むタイロード培地において洗浄した。アストゥリアス産雄牛からの解凍した精液を、室温で700g、8分間、不連続のPercoll密度勾配2.5mL90v/vPercollの上に2.5mL45v/vPercollで遠心分離することにより、精子運動率を取得した。ペレットを、Hepes緩衝タイロード培地で洗浄し、5分間100gでの遠心分離により再びペレット化した。受精を、5CO2で加湿した空気雰囲気において38.5°Cで22時間、最終的な濃度が1×106の精子mL-1の、500μLの受精培地で行った。個々の雄牛間の変動を、すべての実験において2頭の雄牛からの等しい精液サンプルを混合することによって回避した。22時間、精子との共培養の後、予定接合子を、鉱油の下で25μl培養液滴1胚/μlに移植した。胚を、5CO2、5O2で加湿した雰囲気において38.5°Cで7日間または8日間、人工卵管液培地で培養した。卵割速度を受精後48時間で記録し、胚盤胞の数を、受精後7日目および8日目に確定した。胚ガラス化ガラス化-加温液を処方するために使用した保持培養液HMは、20FCSでHepes緩衝したTCM199であった。すべてのステップを、各ステップを視覚化するために実体顕微鏡を用いて、38.5°Cに加熱された層流フード下で行った。胚盤胞を、HMで10分間~15分間、7.5エチレングリコールEGおよび7.5ジメチルスルホキシドDMSOを含む平衡液に移植した。最初の収縮の後、胚盤胞はそれらの元の体積に戻り、その後、それらを、HMに溶解した15EG、15DMSOおよび0.5Mスクロースを含むガラス化液VSに移した。60秒間の培養の後、1つの胚盤胞を胚取付先端2aに装填し、残りの溶液を大部分除去して、胚盤胞を覆う薄層のみを残し、サンプルを液体窒素内に迅速に浸漬した。その後、プラスチックキャップまたはカバーストロー4を装置1の上に引き寄せた。VSへの浸漬から液体窒素への投入までのプロセス全体を、60秒間~90秒間内で完了した。装填した装置を、-196°Cの液体窒素に保管した。胚加温および移植現場状態液体窒素から装置1全体を取り除いた直後、100マイクロリットルの加温液HMに溶解した1Mスクロースを、標準シリンジ8を用いて中空ハンドル5の内部流路Cを通して保護キャップ4に直接加えた。1分間後、100マイクロリットルのHMを、同様に保護キャップ4に加えた。胚からの凍結保護物質の拡散を、保護キャップ4を緩やかに動かすことによって行った。胚の子宮移植を、人工授精と同じ手続きを用いて希釈の直後に行った。原型試験結果本発明者らの実験室において行われた予備試験において、加温液が本発明によって提供される装置1に加えられたときに、胚がまったく喪失せず、それにより、すべての胚が加温後にカバーストロー4に残った。当業者は、添付の特許請求の範囲において定義されるような本発明の範囲から逸脱することなく、記載されている実施形態において変形および変更を導入することができる。参考文献AbdelhafezFF,DesaiN,Abou-SettaAM,FalconeT,GoldfarbJ.2010Slowfreezing,vitrificationandultra-rapidfreezingofhumanembryos:asystematicreviewandmeta-analysis.ReprodBiomedOnline20:209-222.AntinoriM,LicataE,DaniG,CerusicoF,VersaciC,AntinoriS2007Cryotopvitrificationofhumanoocytesresultsinhighsurvivalrateandhealthydeliveries.ReprodBiomedOnline14,72-9.BoglioloL,AriuF,RosatiI,ZeddaMT,PauS,NaitanaS2006Vitrificationofimmatureandinvitromaturedhorseoocytes.ReprodFertilDevelop.18,149-150[Abstract].CoboA,KuwayamaM,PerezS,RuizA,PellicerA,RemohiJ2007ComparisonofconcomitantoutcomeachievedwithfreshandcryopreserveddonoroocytesvitrifiedbytheCryotopmethod.FertilSteril.ChenSU,LienYR,ChengYU,ChenHF,HoHN,YangYS2001VitrificationofmouseoocytesusingclosedpulledstrawsCPSachievesahighsurvivalandpreservesgoodpatternsofmeioticspindles,comparedwithconventionalstraws,openpulledstrawsOPSandgrids.HumanReproduction16,2350-2356.ChianRC,KuwayamaM,TanL,TanJ,KatoO,NagaiT2004Highsurvivalrateofbovineoocytesmaturedinvitrofollowingvitrification.JReprodDev50,685-96.DuY,ZhangY,etal.2007Simplifiedcryopreservationofporcineclonedblastocysts.Cryobiology54,181-7.GasparriniB,AttanasioL,DeRosaA,MonacoE,DiPaloR,CampanileG2007CryopreservationofinvitromaturedbuffaloBubalusbubalisoocytesbyminimumvolumesvitrificationmethods.AnimReprodSci98,335-42.HochiS,TeraoT,KameiM,KatoM,HirabayashiM,HiraoM2004Successfulvitrificationofpronuclear-stagerabbitzygotesbyminimumvolumecoolingprocedure.Theriogenology61,267-75.IsachenkoV,AlabartJL,etal.2003aNewtechnologyforvitrificationandfieldmicroscope-freewarmingandtransferofsmallruminantembryos.Theriogenology59,1209-18.IsachenkoV,SelmanH,IsachenkoE,MontagM,El-DanasouriI,NawrothF2003bModifiedvitrificationofhumanpronuclearoocytes:efficacyandeffectonultrastructure.ReprodBiomedOnline7,211-6.IsachenkoVV,IsachenkoEF,OstashkoFI,GrishchenkoVI1997Ultrarapidfreezingofratembryoswithrapiddilutionofpermeablecryoprotectants.Cryobiology34,157-64.IwayamaH,HochiS,KatoM,HirabayashiM,KuwayamaM,IshikawaH,OhsumiS,FukuiY2004Effectsofcryodevicetypeanddonors’sexualmaturityonvitrificationofminkewhaleBalaenopterabonaerensisoocytesatgerminalvesiclestage.Zygote12,333-8.KobayashiK,NagashimaH,YamakawaH,KatoY,OgawaS1990Thesurvivalofwholeandbisectedrabbitmorulaeaftercryopreservationbythevitrificationmethod.Theriogenology33,777-88.KuwayamaM,VajtaG,KatoO,LeiboSP2005Highlyefficientvitrificationmethodforcryopreservationofhumanoocytes.ReprodBiomedOnline11,300-8.LaneM,SchoolcraftWB,GardnerDK1999Vitrificationofmouseandhumanblastocystsusinganovelcryoloopcontainer-lesstechnique.FertilSteril72,1073-8.LaowtammathronC,LorthongpanichC,Ketudat-CairnsM,HochiS,ParnpaiR2005Factorsaffectingcryosurvivalofnuclear-transferredbovineandswampbuffaloblastocysts:effectsofhatchingstage,linoleicacid-albumininIVCmediumandFicollsupplementationtovitrificationsolution.Theriogenology64,1185-96.LeiboSP,MapletoftRJ1998DirecttransferofcryopreservedcattleembryosinNorthAmerica.Proc.17thAnnualConventionoftheAmericanEmbryoTransferAssociationAETA,October,SanAntonio,Texas.,91-98.LiebermannJ,TuckerMJ,GrahamJR,HanT,DavisA,LevyMJ2002BlastocystdevelopmentaftervitrificationofmultipronuclearzygotesusingtheFlexipetdenudingpipette.ReprodBiomedOnline4,146-50.LiT,MaiQ,GaoJ,ZhouC.2010Cryopreservationofhumanembryonicstemcellswithanewbulkvitrificationmethod.BiolReprod825:848-853.LucenaE,BernalDP,LucenaC,RojasA,MoranA,LucenaA2006Successfulongoingpregnanciesaftervitrificationofoocytes.FertilSteril85,108-11.MartinoA,SongsasenN,LeiboSP1996Developmentintoblastocystsofbovineoocytescryopreservedbyultra-rapidcooling.BiolReprod54,1059-69.MatsumotoH,JiangJY,TanakaT,SasadaH,SatoE2001Vitrificationoflargequantitiesofimmaturebovineoocytesusingnylonmesh.Cryobiology42,139-44.RichardsM,FongCY,TanS,ChanWK,BongsoA.2004Anefficientandsafexeno-freecryopreservationmethodforthestorageofhumanembryonicstemcells.StemCells22:779-789;StehlikE,StehlikJ,KatayamaKP,KuwayamaM,JamborV,BrohammerR,KatoO2005Vitrificationdemonstratessignificantimprovementversusslowfreezingofhumanblastocysts.ReprodBiomedOnline11,53-7.SuccuS,LeoniGG,BebbereD,BerlinguerF,MossaF,BoglioloL,MadedduM,LeddaS,NaitanaS2007Vitrificationdevicesaffectstructuralandmolecularstatusofinvitromaturedovineoocytes.MolReprodDev74,1337-44.SzellA,SheltonJN1986Sucrosedilutionofglycerolfrommouseembryosfrozenrapidlyinliquidnitrogenvapour.JReprodFertil76,401-8.UshijimaH,YoshiokaH,EsakiR,TakahashiK,KuwayamaM,NakaneT,NagashimaH2004Improvedsurvivalofvitrifiedinvivo-derivedporcineembryos.JReprodDev50,481-6.VajtaG,HolmP,KuwayamaM,BoothPJ,JacobsenH,GreveT,CallesenH1998OpenPulledStrawOPSvitrification:anewwaytoreducecryoinjuriesofbovineovaandembryos.MolReprodDev51,53-8.WobusAM.2001Potentialofembryonicstemcells.MolAspectsMed22:149-164."