"ラクトバシルス属微生物で発酵させた菊芋発酵抽出物を有効成分として含む糖尿病の予防及び治療用薬学組成物。ラクトバシルス属微生物で発酵させた菊芋発酵抽出物を有効成分として含む糖尿病の予防及び改善用健康食品組成物。前記ラクトバシルス属微生物はラクトバシルスラムノース、ラクトバシルスアシドフィルース、ラクトバシルスプランタルーム、ラクトバシルスブルガリクス、ラクトバシルスカセイ、ラクトバシルスラクチス、ラクトバシルスンコンヒュース、ラクトバシルスルトリ、ラクトバシルスブレビス、ラクトバシルスデルブルキー、ラクトバシルスジョンスニー、ラクトバシルスラムノサス、ラクトバシルスサケイ及びラクトバシルスブチネリからなる群より選ばれたことを特徴とする第1項記載の組成物。前記ラクトバシルス属微生物はラクトバシラスプランタルームまたはラクトバシルスアシドフイルースであることを特徴とする第2項記載の組成物。前記菊芋発酵抽出物は菊芋粉末に蒸留水及びラクトバシルス属微生物を添加して20°C乃至40°Cで1乃至60時間発酵して製造することを特徴とする第2項記載の組成物。本発明者等は新たな糖尿病の予防、改善及び/又は治療用組成物について研究を進めていく中で、菊芋をラクトバシルス属微生物を利用して発酵した際、アルファグルコシダーゼの抑制活性が一層増加し、糖尿病に対する予防及び治療効果が優れた発酵物が製造されることを確認して本発明を完成した。本発明の目的はラクトバシルス属微生物で発酵させた菊芋発酵抽出物を有効成分として含む糖尿病の予防及び治療用組成物を提供することである。本発明の他の目的はラクトバシルス属微生物で発酵させた菊芋発酵抽出物を有効成分として含む糖尿病の予防及び改善用健康食品組成物を提供することである。前記目的を達成するために、本発明はラクトバシルス属微生物で発酵させた菊芋発酵抽出物を有効成分として含む糖尿病の予防及び治療用薬学的組成物を提供することである。本発明の他の目的を達成するために、本発明はラクトバシルス属微生物で発酵させた菊芋発酵抽出物を有効成分として含む糖尿病の予防及び改善用機能性食品組成物を提供する。以下、本発明を詳細に説明する。本発明はラクトバシルス属微生物で発酵させた菊芋発酵抽出物を有効成分として含む糖尿病の予防及び治療用薬学的組成物に関する。菊芋は天然インシュリン食品として評価されており、菊芋はイヌリン成分が15乃至20含有されているが、これは澱粉を含まずヒトの消化酵素で分解できない成分であって、血中に吸収されずにそのまま排出される。さらに、一緒に摂取した食品が小腸で糖質吸収を遅らせる作用をして血糖上昇を抑制する。発酵とは、微生物そのものが有する酵素を利用して有機物を分解させる過程であって、薬用成分を有する人参等の漢方薬剤の場合、発酵を経ると体内吸収効率が増加するとして知られている。本発明で前記ラクトバシルス属微生物はこれに限定はされないが、ラクトバシルスラムノサス、ラクトバシルスアシドフィルス、ラクトバシルスプランタルーム、ラクトバシルスブルガリクス、ラクトバシルスカセイ、ラクトバシルスラクチス、ラクトコークスコンフサス、ラクトバシルスルトリ、ラクトバシルスブレビス、ラクトバシルスデルブルキー、ラクトバシルスジョンソニー、ラクトバシルスラムノサス、ラクトバシルスサケイ又はラクトバシルスブチネリでもある。望ましくは、ラクトバシルスアシドフィルース、又はラクトバシルスプランタルームでもある。本発明の一実施例では発酵により有効成分の変化が生じ、薬用成分の効果が向上するか否かを確認するため、発酵させていない菊芋と、菊芋をアスファジラースオリザエ、バシルスリケニホミス、ラクトバシルスプランタルーム、ラクトバシルスアシドフィルース、及びバシルスサブチリスで発酵させた菊芋発酵物であるアルファーグルコシターゼ抑制効果を測定した結果、ラクトバシルス属微生物で発酵させた菊芋発酵物が、発酵していない菊芋または他の微生物で発酵させた菊芋発酵物より効果がはるかに優れていることを確認した。本発明の他の実施例では発酵により有効成分の変化が起こり、薬用成分の効果が向上するか否かを確認するため、発酵させていない菊芋と発酵させた菊芋の発酵物の成分を比べて薄膜クロマトグラフィー及びフラクタン含量を比較する実験を行った結果、菊芋ラクトバシルスプランタルーム発酵物の場合、高流動性成分が増加され、このような結果からラクトバシルスプランタルームで菊芋を発酵した際、一部成分の変化が起ることが分った。本発明の菊芋のラクトバシルスプランタルーム発酵抽出物の動物モデルでの糖尿病治療効果を確認するため、本発明の一実施例では糖尿病を誘発したねずみに、本発明の菊芋ラクトバシルスプランタルーム発酵抽出物を含有した食餌を投与して、血中グルコースの量、体重変化量、食後血糖変化量、小腸内グルコシダーゼ活性及び血液分析等を行った。前記実験の結果から菊芋ラクトバシルスプランタルーム発酵抽出物は糖尿病の治療効果を有する事実を確認した。本発明はラクトバシルス属微生物で発酵させた菊芋発酵抽出物を有効成分として含む糖尿病の予防及び治療用薬学的組成物を提供する。本発明の菊芋ラクトバシルス属微生物で発酵物させた菊芋発酵物は、それ自体または薬学的に許容可能な塩の形態で使用できる。前記薬学的に許容されるとは、生理学的に許容されヒトに投与された時、通常的にアレルギー反応またはこれと類似した反応を起こさないことを意味し、前記塩では薬学的に許容可能な遊離酸により、形成された酸付加塩が好ましい。前記遊離酸は有機酸と無機酸を使用できる。前記有機酸はこれに制限はされないが、クエン酸、酢酸、乳酸、酒石酸、マレイン酸、フマル酸、ギ酸、プロピオン酸、シュウ酸、トリフルオロ酢酸、ベンゾ酸、グルコン酸、メタスルホン酸、グリコール酸、琥珀酸、4トルエンスルホン酸、グルタミン酸及びアスパラギン酸を含む。前記無機酸はこれに制限はされないが、塩酸、臭素酸、硫酸及びリン酸を含む。前記薬学的組成物の場合には、前記ラクトバシルス属微生物で発酵させた菊芋発酵物を単独で含むか、または一つ以上の薬学的に許容される担体、賦形剤または希釈剤を追加して含むことができる。前記の薬学的に許容されるとは、生物学的に許容されてヒトに投与された時、通常的にアレルギー反応またはこれと類似した反応を起こさない組成物を意味する。薬学的に許容される担体には、例えば、経口投与用担体または非経口投与用担体を追加して含むことができる。経口投与用担体はラクトース、澱粉、セルロース誘導体、マグネシウムステアレート、ステアリン酸等を含むことができる。さらに、非経口投与用担体は水、適切なオイル、食塩水、水性グルコース及びグリコール等を含むことができ、安定化剤を追加して含むことができる。適切な安定剤には亜硫酸水素ナトリウム、亜硫酸ナトリウムまたはアスコルビン酸のような硫酸化剤がある。適切な保存剤にはベンズアルコニウムクロライド、メチルまたはプロピルパラベン及びクロロブタノールがある。その他の薬学的に許容される担体には、下記文献の記載を参考にすることができる。本発明の糖尿病予防又は治療用薬学的組成物は、ヒトを含む哺乳動物にどのような方法でも投与することができる。例えば、経口または非経口で投与できる。非経口投与方法にはこれに限定はされないが、静脈内、筋肉内、動脈内、骨髄内、境膜内、心臓内、経皮、皮下、腹腔内、鼻腔内、腸管、局所、舌下または直腸内に投与することもできる。本発明の薬学的組成物は経皮投与することができる。前記の経皮投与とは、本発明の薬学的組成物を細胞または皮膚に投与して糖尿病の予防又は治療用薬学組成物に含まれた活性成分が皮膚内に伝達されることを意味する。例えば、本発明の薬学組成物を注射型製剤に製造してこれを30ゲージの細い注射針で皮膚を軽く刺す方法、または皮膚に直接塗布する方法で投与することもできる。前記薬学組成物は上述したように投与経路によって経口投与用または非経口投与用製剤に剤形化することができる。経口投与用製剤の場合に、本発明の組成物は粉末、顆粒、錠剤、丸剤、糖衣錠剤、カプセル剤、液剤、ゲル剤、シロップ剤、スラリー剤、懸濁液などで当業界に広く知られた方法を利用して剤形化することができる。例えば、経口用製剤は活性成分を固体賦形剤と配合してこれを粉砕し、適切な補助剤を添加して顆粒混合物に加工することにより、錠剤または糖衣錠剤を得ることができる。適切な賦形剤の例にはラクトース、デキストロース、スクロース、ソルビトール、マンニトール、キシリトール、エリスリトール及びマルチトールなどを含む糖類と、トウモロコシ澱粉、小麦澱粉、お米澱粉及ぼすジャガ芋澱粉などを含む澱粉類、セルロース、メチルセルロース、ナトリウムカルボキシメチルセルロース及びヒドロキシプロピルメチルセルロースなどを含むセルロース類、ゼラチン、ポリビニルピロリドンなどのような充填剤を含むことができる。場合によっては、架橋結合ポリビニルピロリドン、寒天、アルギン酸またはナトリウムアルギネートなどを崩解剤として添加することができる。本発明の薬学組成物は抗凝集剤、潤滑剤、湿潤剤、香料、乳化剤などを含むことができる。非経口投与用製剤の場合には、注射剤、クリーム剤、ローション剤、外用軟膏剤、オイル剤、保湿剤、ゲル剤、エアロゾル及び鼻腔吸込み剤の形態で当業界に広く知られた方法で製剤化することができる。これら製剤は全ての製薬化学に一般的に公知の処方書である文献Remington’sPharmaceuticalScience15thEdition1975MackPublishingCompanyEastonPennsylvania18042Chapter87BlaugSeymourに記載されている。本発明の菊芋ラクトバシルスプラタルーム発酵物の全有効量は単一投与量で患者に投与することができ、多重投与量で長期間投与される分割治療方法により投与することができる。本発明の薬学組成物は疾患の程度により有効成分の含量を異にすることができる。本発明のラクトバシラス属微生物で発酵させた菊芋発酵物の全用量は1日当り患者の体重1kg当り約001乃至1000mg、望ましくは、01乃至100mgである。前記菊芋ラクトバシルスプラタルーム発酵物の用量は薬学組成物の投与経路及び治療回数だけでなく、患者の年令、体重、健康状態、性別、疾患の重症度、食餌及び排泄率など多様な要因などを考慮して、患者に対する有効投与量が決まるので、このような点を考える時、当分野の通常の知識を有する者であれば、前記ラクトバシラス属微生物で発酵させた菊芋発酵物を糖尿病の予防又は治療剤としての特定の使用に伴う適切な有効投与量を決めることができる。本発明に伴う薬学組成物は本発明の効果を示す限りその剤形、投与経路及び投与方法に制限はされない。前記薬学組成物は、抗凝集剤、潤滑剤、湿潤剤、香料、乳化剤及び防腐剤などを追加して含むことができる。非経口投与用製剤の場合には、注射剤の形態で当業界に広く知られた方法で剤形化することができる。これらの剤形は全ての製薬化学に一般的に公知の処方書の文献Remington’sPharmaceuticalScience15thEdition1975MackPublishingCompanyEastonPennsylvania18042Chapter87BlaugSeymourに記載されている。本発明はラクトバシラス属微生物で発酵させた菊芋発酵抽出物を有効成分として含む糖尿病の予防及び改善用健康食品組成物に関する。本発明の食品組成物は機能性食品、栄養補助剤、健康食品及び食品添加剤などを全て含む。前記類型の食品組成物は当業界に広く知られた一般的な方法により多様な形態に製造することができる。これに限定はされないが、例えば、健康食品にはラクトバシルス属微生物で発酵させた菊芋発酵物をお茶、ジュース及びドリンクの形態に製造して飲用できるように液状化、顆粒化、カプセル化及び粉末化して摂取することができる。さらに、ラクトバシルス属微生物で発酵させた菊芋発酵物と糖尿病に効果があるとして知られた公知の活性成分とともに、混合して組成物の形態に製造することができる。また機能性食品にはこれに限定はされないが飲料アルコール性飲料を含む、果実及びその加工食品例:果実缶詰、瓶詰、ジャム、ママレートなど、魚類、肉類及びその加工食品例:ハム、ソーセージ、コーンビーフなど、パン類及び麺類例:うどん、そば、ラーメン、スパゲティー、マカロニなど、果汁、各種ドリンク、クッキー、飴、乳製品例:バーター、チーズなど、食用植物油脂、マーガリン、植物性蛋白質、レトルト食品、冷凍食品、各種調味料例:味噌、醤油、ソースなどなどにラクトバシルス属微生物で発酵させた菊芋発酵物を添加して製造することができる。さらに、ラクトバシルス属微生物で発酵させた菊芋発酵物を食品添加剤の形態で使用するためには、粉末または濃縮液状に製造して使用することができる。本発明の食品組成物の内、ラクトバシルス属微生物で発酵させた菊芋発酵物の含有量ではこれに限定はされないが、望ましくは最終的に製造された食品中に01乃至90重量である。より望ましくは本発明のラクトバシルス属微生物で発酵させた菊芋発酵物を有効成分として含有する食品組成物は、特に糖尿病に効果があるとして知られた活性成分とともに混合して健康食品の形態に製造することができる。本発明のラクトバシルス属微生物で発酵させた菊芋発酵物は、菊芋粉末に蒸留水及びラクトバシルス属微生物を添加して20°C乃至40°Cで1乃至60時間発酵して製造する。これに限定はされないが、前記発酵抽出は物菊芋粉末に蒸留水及びラクトバシルス属微生物、具体的にラクトバシルスプランタルームを添加して35°C乃至40°Cで12乃至60時間発酵する段階;前記発酵された菊芋を100乃至150°Cで10乃至20分間殺菌して凍結乾燥する段階;前記殺菌処理した発酵菊芋に水を加え、ソニケータで抽出して遠心分離する段階;及び前記遠心分離後上澄液を採って乾燥する段階を含む過程により製造される。本発明では菊芋の乳酸菌発酵物の中でも、アルファグルコシターゼ活性が最も高く示された菌株であるラクトバシルス属微生物、特に、ラクトバシルスプランタルームまたはラクトバシルスアシドフィルースを利用して発酵物を製造した。望ましくはラクトバシルスプランタルーム、より望ましくはラクトバシルスプランタルームはKCTC3103を利用した。ラクトバシルスプランタルームはかん菌であって、グラム陽性菌である乳酸菌の一種である。牛乳、チーズ、バーター、穀物、パンなどの食品発酵に広く使用され、特に、キムチの発酵に重要な役割をする菌株である。前記ラクトバシルス属微生物で発酵させた菊芋発酵抽出物はソニケーターを利用して抽出する。菊芋をラクトバシルス属微生物で発酵させて発酵物を凍結乾燥し、前記乾燥された発酵物に蒸留水を添加してソニケーターで抽出する。前記抽出はこれに限定はされないが、40°C乃至50°Cで30乃至90分間抽出するのが望ましく、本発明の一実施例では45°Cで1時間抽出した。前記抽出物を分離して菊芋発酵物の水溶性成分のみを採り、これを凍結乾燥する過程を経る。水溶性成分のみを採るために遠心分離する過程を含み、これに限定はされないが、前記遠心分離は2°C乃至5°Cで10乃至20分間が望ましい。本発明の一実施例では4°Cで15分間分離した。凍結乾燥過程は一般的な凍結乾燥過程により行い、前記菊芋のラクトバシルス属微生物発酵物の凍結乾燥と同一な方法で行える。上述したとおり、本発明はラクトバシルス属微生物で発酵させた菊芋発酵抽出物を含む糖尿病の予防、改善及び/又は治療効果を有する組成物に関する。本発明の組成物は発酵していない菊芋抽出物よりも抗糖尿効果が優れていて、新たな糖尿病の予防、改善及び/又は治療用組成物を提供する目的に有用に使用することができる。以下、本発明を実施例により詳しく説明する。ただし、下記実施例は本発明を例示するのみで本発明の内容が下記実施例に限定されるものではない。菊芋発酵物の製造1各乳酸菌種類別発酵物の製造実験材料は紫色の菊芋粉末10乃至20g、または15kgに蒸留水90乃至180mLまたは、150Lを添加し、アスペルギルスオリザ、バシルスリチェニフォミス、ラクトバシルスプランタルーム、バシルスサブチリスBacillussubtillisKCTC1666を2乃至3添加して12乃至60時間発酵した。発酵後80°C乃至125°Cで10乃至20分間殺菌、凍結乾燥して粉末を得た。発酵して得た粉末と発酵しない原材料5に蒸留水500mLを加えて45°Cで1時間ソニケーターを利用して抽出した後、4°C、10000rpmで15分間遠心分離して得た上澄液を凍結乾燥して下記表1のような粉末試料を得た。発酵していない菊芋抽出物と発酵物の抽出物間の収率には殆ど差がなかった。2発酵物内フラクタン含量測定この実験は、MegazymeFructanassayprocedurekitを利用した。SampleBlankは溶媒200μlに01Mアセト酸ナトリウムバッファ100μlを混合し、PAHBAHWorkingReagentを5ml混合し、80°Cで6分間反応後、18乃至20°Cので5分間冷まし、410nmで測定した。D-プラクトーススタンダード測定はD-プラクトーススタンダード200μlと、01Mアセト酸ナトリウムバッファ900μlを混合した。混合した試料の一部200μlに、01Mアセト酸ナトリウム100μlを混合した後、PAHBAHWorkingReagent5mlを混合して80°Cで6分間反応後18乃至20°Cで5分間冷まし、410nmで測定した。4個の試料処理は200μlにスクラーゼ200μlを入れて40°Cで30分間反応させ、水素化ホウ素ナトリウムバッファ200μlを入れて40°Cで30分間反応させた。この反応中に生じた還元糖を糖アルコールに転換する。反応後02Mアセト酸を500μl添加し、この溶液200μlにフルクタナーゼ100μlを入れ、01Mアセト酸ナトリウムバッファ100μlを入れ、40°Cで20分間反応すれば試料そのものの中に含まれているフラクタンがD-プラクトースとD-グルコースで加水分解される。反応後前記物質にPAHBAHWorkingReagentを5mlを混合して80°Cで6分間反応後18乃至20°Cで5分間冷まし、410nmで吸光度を測定した。計算法fructanwwasis=ΔA×F×V/VW×248ΔA=サンプル吸光度ーサンプルブランク吸光度F=D-Fructoseの吸光度変化因子μg=V=使用した溶媒の嵩W=サンプル抽出物の重さその結果、下記表1に示した通り、フラクタンの含量は乳酸菌発酵をしない菊芋と比べて、ラクトバシルスプランタルームで発酵した場合、フラクタンの量が少し減少し、アスペルギルスオリザ、バシルスリチェニフォミス及びバシルスサブチリス発酵物の場合、殆ど変化がないことを確認した。3グルコシターゼ阻害活性測定動物の小腸粘膜から分泌される炭水化物消化酵素の一種であるアルファグルコシダーゼαglucosidaseは基質としてpニトロフェニール-α-D-グルコピラノシドを使用する。アルファグルコシダーゼを利用して溶媒のみを入れた対照群と一定濃度の試料抽出液を入れて反応させた処理区の吸光度変化を観察して試料の酵素阻害活性度を評価した。つまり、PBSに04mgmlBSAbovineserumalbumin、004mgmlNaN3の濃度で溶解し、05Umlのアルファグルコシダーゼ酵素を溶解させて酵素溶液を作り、pニトロフェニール-α-D-グルコピラノシドをPBSに2mM濃度で溶解して基質溶液を作って使用した。酵素液300μlに試料50μlを入れ、水650μlを添加して405nmで試料の吸光度を測定した後、酵素液と試料を同量に、水500μlを添加して基質150μlを加えて室温で3分間反応させ、405nmで吸光度を測定した。酵素活性の阻害程度は下記の式により算出した。酵素活性阻害度=×100S:試料添加後吸光度変化C:試料を添加しない対照群の吸光度変化その結果、下記表1に示した通り、ラクトバシルスプランタルームで発酵させた菊芋発酵物の場合、アルファグルコシダーゼ抑制活性が他の菌株に比べて増加したのを確認した。特に、発酵時間が短いほど抑制効果が増加することが分った。しかしながら、他の菌株の場合、発酵の際、ラクトバシルスプランタルームで発酵した場合に比べてアルファグルコシダーゼ抑制活性が増加せず、その活性度において差が表れ、菊芋を乳酸菌で発酵させた場合であっても全てアルファグルコシダーゼ抑制活性が高くなるものではない事実を分った。4薄膜クロマトグラフィー確認菊芋発酵の際、成分を比較分析するため、発酵前及び乳酸菌発酵物それぞれの試料を対象にクロマトグラフィー分析をした。乳酸菌未処理群、ラクトバシルスプランタルーム発酵群、バシルスサブチリスKCTC1666発酵群及びバシルスサブチリスKFCC11492P発酵群の試料を10mgmL濃度に10μlをTLCした。展開溶媒はAcetonitrileとH2Oを91の比で混合した溶媒を利用した。発色試薬にはsolutionA02geachofanilineanddiphenylamineper20mlof96ethanol20mlとsolutionB2mLを混合したものを利用した。硫酸発色には硫酸10濃度のメタノールを噴射して高温で炭化させた。その結果、図1に示した通り、発酵の際、構成成分の分解により果糖を含む高流動性物質が生成されたことを確認することができた。発酵時間に伴う菊芋発酵物の製造前記実施例1でアルファグルコシダーゼ抑制活性が優れたラクトバシルスプランタルームを利用して、菊芋を発酵時間に伴うアルファグルコシダーゼ抑制活性の変化を測定してその結果を下記表2に示した。前記表2に示した通り、ラクトバシルスプランタルームで発酵物させた菊芋発酵抽出物は、発酵時間によってアルファグルコシダーゼ抑制効果が変化するが、12乃至60時間まではアルファグルコシダーゼ抑制効果が優れて糖尿病治療効果も優れた結果をもたらした。菊芋発酵物の糖尿病治療効果実験動物及び飼料管理糖尿実験動物は株中央実験動物から6週令の雄C57BLKSJdbdbmouse19匹と、正常対照群C57BLKSJdbmmouse5匹を分譲してもらい1週間適応させて実験に利用した。動物実験の飼育環境は温度23°C、湿度60、騒音60phone以下、臭気20ppm以下、照明150300lux、照明時間12時間lightdarkcycleを維持した。飼料ピュリナー、韓国と水を自由給与した。動物実験飼育管理はfortheCareandUseofLaboratoryAnimals基準にして実験は翰林大学校実験動物倫理委員会の承認を得て行われた。実験設計実験動物は16時間絶食後、血糖測定器で尻尾静脈から血糖を測定した。空腹血糖250mgdL以上を示す動物を糖尿病が誘発されたものと見做して実験に使用した。試料の抗糖尿活性を調べるため試料を飼料に添加して給与した。糖尿が誘発された動物を無作為で4群の試験群に分けてCdiabeticcontrol3匹、ABアカボス200mgkg6匹、LJA1ラクトバシルスプランタルーム発酵菊芋15gkgを含む食餌7匹、LJA2ラクトバシルスプランタルーム発酵菊芋3gkgを含む食餌7匹などに処理し、正常対照群にC57BLKSJdbmmouse5匹を使用して10週間空腹血糖及び体重変化を測定した。ラクトバシルスプランタルーム発酵菊芋は前記実施例1でラクトバシルスプランタルームで36時間発酵させた菊芋発酵抽出物を使用した。その結果、図2に示した通り、給与1週目に一般飼料のみを給与したcontrol群が急激な血糖上昇が起こったが、菊芋発酵抽出物及びアカボスを給与した群では、緩慢な上昇を示した。全給与期間中菊芋発酵抽出物を給与した群がcontrol群に比べて血糖が低い傾向を示し、最終7週目にはLJA1群の血糖がさらに低くなり、他の群では見られなかった。体重変化について、図3に示した通り、7週間の実験期間中の体重変化は正常ねずみと肥満糖尿ねずみとの体重の差があるのみ、各処理区間の体重には大きな差がなかった。下記表3は各群間の日々の飼料摂取量と飼料効率を計算した結果を示したものである。図3に示した結果と同様に表4に示した通り、正常群と肥満糖尿誘発ねずみとの間の差があるのみで群間の差はなかった。AB:糖尿Acarbose05gkgを含む食餌LJA1:糖尿LJA15gkgを含む食餌LJA2:糖尿LJP3gkgを含む食餌a、b、は同一な行に含まれた互いに異なる文字は明らかに異なるものであることを意味する。それぞれの数値±SD、FER、foodefficiencyratio=bodyweightgainfoodintake食後血糖変化測定試料の食後血糖降下効果を測定するため、実験8週目に6時間空腹後C群とLean群は可溶性澱粉を、アカボス投与群は可溶性澱粉とアカボス、高濃度を経口投与した。投与前0分と投与後3060120分にそれぞれ尻尾静脈から血糖を測定した。その結果、図4に示した通り、糖尿病群では正常群に比べて食後30分の血糖量が増加したことが分り、何も投与していない糖尿病群に比べて菊芋発酵抽出物投与群では、濃度依存的に血糖の上昇率が減少したことを確認した。具体的に図5では、図3のグラフの曲線下面積を比較して表した。その結果、糖尿病群のCではその面積が15000以上に大きく増加したが、菊芋投与群であるLJA1及びLJA2は15000を越えず、10000に近い値を有するものとして示された。前記結果からLJA投与群では食後血糖上昇率が比較的少ないことが分った。小腸のアルファグルコシダーゼ活性検索前記実験対象マウスの小腸を摘出し、氷の上で生理食塩水で洗滌して十二指腸部分を同じ長さに3等分してそれぞれをproximalmiddledistalに区分して生理食塩水で洗滌した後、均質化緩衝液を添加して均質化後20000gで30分間遠心分離して得た沈殿物に生理食塩水を加え、3000rpmで40分間遠心分離して上澄液を酵素液として使用した。基質10mmsucrose2mMmaltose1starchin01MphosphatebufferpH701mlに各部分別に分離した酵素液01mlと01Mリン酸バッファ02mlと混合して37°Cでスクロースは180分、マルトースは40分、澱粉は120分間反応させ、100°Cで5分間処理して反応を停止させた。それぞれの試料を3000rpmで5分間5遠心分離して得た上澄液01mlをグルコース試薬075mlと37°Cで30分間反応させ、1NHCl05mlで反応停止後492nmで吸光度値を測定した。その結果、図6に示した通り、菊芋発酵抽出物の給与により、マルターゼの活性がcontrolに比べてproximalでやや低く表われ、他の部位では差がなかった。反面ラクターゼの抑制活性は小腸全部位で表われた。特にmiddledistalで特定的に表われ、菊芋発酵抽出物の濃度増加に伴い、抑制活性が増加した。本発明の発酵物はスクラーゼの活性には影響は及ばなかったが、distal部位でLJA1LJA2処理群全てcontrolより有意的に低い活性を示した。血液分析実験終了後対象マウスの眼窩より採血した。血液から長期間維持血糖水準を確認するために、糖化血色素を利用してHbAlcを測定した。血中グルコース濃度を血液から4°Cで3000rpmで15分間遠心分離して得た血漿を血液生化学測定器で測定した。血中インシュリン及びアジポネクチン含量はそれぞれmouseinsulinELISAKitShibayJapanmouseadiponectinAcrp30kitを給与した群がcontrolより特徴的に高く表われながら、インシュリン分泌促進またはインシュリン分泌器官の損傷が抑制されたことが分った。AB:糖尿acarbose05gkgを含む食餌LJA1:糖尿LJA15gkgを含む食餌LJA2:糖尿LJP3gkgを含む食餌a、b、c、dは一つの行に含まれた互いに異なる文字は明らかに異なるものであることを意味する。それぞれの数値さらに、血漿内Triglyceride、TCHOLの量は血液から4°Cで3000rpmで15分間遠心分離して得た血漿を血液生化学測定器で測定した。HDLCHOと血清内遊離脂肪酸はそれぞれHDLCholesterelKitNEFAHR2kitで測定した。HTRはHDLCHOCHOとTCHOLの比率HDLCHOTCHOLで表わし、全体のコレステロールの内でHDLコレステロールの比率を把握することができるように表示してくれた。その結果、図5に示した通り、血液内トリグリセリドの量はLJA1及びLJA2を投与した群がcontrolに比べて顕著に減少したことが分り、LJA1とLJA2間の有意的な差はないものと確認することができた。NEFAの血清内水準も、controlと比べてLJA1及びLJA2投与群でそれぞれ14、16減少したことが分った。さらに、血液内総コレステロール量は各群別に殆ど差はなかったが、HDL総コレステロール比率はcontrolに比べてLJA投与群においてさらに高く示された。特に、kg当たり3gの菊芋発酵物を投与したLJA2群において最もHTRが高く確認され、controlのHDLコレステロール水準の1389に測定された。Lean,C:糖尿病群AB:糖尿Acarbose05gkgを含む食餌LJA1:糖尿LJA15gkgを含む食餌LJA2:糖尿LJP3gkgを含む食餌a、b、c、dは一つの行に含まれた互いに異なる文字は明らかに異なるものであることを意味する。それぞれの数値;HTR=HDLChoresteroltotalcholestew100"