インビトロの組織化された二次元細胞培養物を保存および/または輸送する方法であって、a非対称支持体に固定された、組織化された細胞培養物を培地中1~5の濃度のゼラチン溶液で被覆し、前記細胞培養物が細胞を適切な機能状態で含んでなり、b前記支持体へ加えられたゼラチンを15~25°Cの温度で固化させ、およびc15~25°Cの温度で96時間以内の期間で細胞培養物を保存および/または輸送することを含んでなる、方法。a前記ゼラチンを液化し、b該ゼラチンを除去し、かつ培地によってその入れ替えをし、およびc培養物をインキュベートすることをさらに含んでなる、請求項1に記載の方法。前記組織化された二次元細胞培養物が、分化し、分極化し、かつ機能的に活性であることを特徴とする、請求項1または2に記載の方法。前記細胞培養物が、コラーゲン支持体上で集密化するまで増殖したHuvec細胞および分化Caco‐2細胞、または線維芽細胞、腫瘍細胞、肝臓細胞、内皮細胞などのような、単層で増殖しうるいずれか他のタイプの細胞から選択されることを特徴とする、請求項3に記載の方法。2.5ゼラチン溶液が用いられることを特徴とする、請求項1~4のいずれか一項に記載の方法。前記ゼラチンを、15~25°Cの温度で30分~12時間かけて固化させることを特徴とする、請求項1~5のいずれか一項に記載の方法。非対称支持体がトランスウェルタイプ支持体であることを特徴とする、請求項1~6のいずれか一項に記載の方法。前記ゼラチンの液化を、35~40°Cで1~4時間かけて行うことを特徴とする、請求項1~7のいずれか一項に記載の方法。前記ゼラチンの液化を37°Cで行うことを特徴とする、請求項8に記載の方法。前記後続の培養物のインキュベートを、35~40°Cで1時間~8日間にわたり行うことを特徴とする、請求項1~9のいずれか一項に記載の方法。前記後続の培養物のインキュベートを37°Cで行うことを特徴とする、請求項10に記載の方法。請求項1~11のいずれか一項のインビトロの組織化された二次元細胞培養物を保存および/または輸送するためのキットであって、i非対称支持体、およびii培地中濃度1~5のゼラチン溶液を含んでなる、キット。前記非対称支持体がトランスウェルタイプ支持体であることを特徴とする、請求項12に記載のキット。例1:インビトロCaco‐2腸バリアモデルを保存および/または輸送する方法1‐ゼラチン調製使用濃度溶解しうる最大濃度:10で直接的に、50°CでDMEM培地1g/Lグルコースに溶解された、A型豚皮ゼラチンを用いる。本例では、粉末ゼラチン2.5gを秤量し、DMEM培地1g/Lグルコース100mLで溶解させる。0.22μm孔フィルター濾過で直ちに加熱しながら滅菌する。次いで、それを牛胎児血清10FBSおよびペニシリン/ストレプトマイシン/L‐グルタミン完全培地で補充する。最後に、それをその使用まで4°Cで保存する。2‐分極Caco‐2培養物の調製被覆:細胞を接種する12時間前、インサート6.5mm径トランスウェルを対応サイズのウェルへ入れ、各インサートのポリカーボネートフィルター0.4μm孔径半透膜の上面に無血清のI型ラット尾コラーゲン溶液1g/Lグルコースを塗布し、それを細胞培養器湿度90、5CO2中で37°Cにする。その使用前に、過剰の被覆溶液を上面から吸引し、それを培養器に15~30分間入れ、Caco‐2細胞を5×105細胞/cm2の密度で接種する。培養物を13日間維持し、48~72時間毎に培地を変え、上部区画に完全培地300μLおよび下部区画に900μLを入れる。13日目に、TEER経上皮電気抵抗および傍細胞透過測定により、Caco‐2単層のバリア状態コントロール分極化を行う。これらのコントロールから、ゼラチンで被覆前に、バリアとしての細胞系の機能状態を調べられる。3‐ゼラチン適用完全に液化し、培養温度37°Cで平衡化するまで、それを37°Cで培養浴に入れる。次いで、培地を各インサートの2区画から除去し、培養物を各インサートの2区画において培地で洗浄する。次いで、2.5液体ゼラチン300μLを上部区画におよび900μLを下部区画に適用し、それをフローフード中室温20~25°Cで2~3時間かけて固化させる。ゼラチンが固化したら、プレートをパラフィルムで密封し、それらが用いられる最長4日後までそれらを室温で保つ。4‐ゼラチン除去固定培養物の使用を必要とするときには、好ましくは37°C、湿度90および5CO2で3~4時間かけてゼラチンが完全に液化するまで、セルインキュベーター内で固体ゼラチン状態でプレートをインキュベートする。次いで、それを両区画から吸引により除去し、培養物を37°Cで平衡化培地により洗浄する。次いで、Caco‐2細胞用の特定培地を適用し、その使用最短24時間;最長9日後まで、細胞を好ましくは37°C、湿度90/5CO2でインキュベートし、48~72時間毎に培地を変える。表1で示されるように、ゼラチン中で5および7日間の固定後に得られたTEER値には、それを適用する前に得られたコントロール値と比較して、有意の低下が観察される。この結果は、本発明で開示されたゼラチン中の保存方法が:1機能バリア状態に影響を与えることなく、室温にて4日以内はCaco‐2系を固定すること、および2ゼラチンが除去されたら、バリア透過アッセイを行うために機能状態とした後9日以内は維持しうることを示している。例2:ゼラチン適用前における培養物の特徴付けおよび培養物寿命の測定表IIは、単層を形成するトランスウェルタイプ支持体で培養でき、ゼラチン中バリア状態で保存および輸送しうる、一部の細胞タイプ、ひいては本輸送方法が適用しうる培養物のいくつかを示している。‐Caco‐2、TC7、HT29M6:腫瘍由来の腸上皮系‐MDCK:腎上皮系‐HEK:一次ヒト皮膚角化細胞‐HUVEC、HMEC‐1、BBEC、HAEC、BAEC:一次内皮細胞培養物または系表IIで示される培養時間は、分極単層を得る上で最良の時間間隔に関し、それを超えると、それは細胞バリアとして最良の機能性を失ってしまう。機能バリア状態を保存して、アッセイを行う時間をユーザーに残せる、これら細胞系の寿命ゼラチンが適用される培養物のモーメントの測定が、TEERおよび傍細胞透過測定を用いて実験的に行われた。適切な機能状態に達した時点で、ゼラチンを培養物に適用する。Caco‐2細胞バリア透過試験の場合は、ゼラチンを好ましくは13日目細胞が機能性分極単層またはバリアを形成し始めるほぼ最短の時間に適用する。それらは室温で約17日目までゼラチン中で保存でき、それらの機能バリア性を失うことなく、約25日目まで用いられる。各種細胞タイプ線維芽細胞、腫瘍系の寿命、または表IIで記載されているが、バリア透過アッセイ付着アッセイ、走化性アッセイ、浸潤アッセイの異なる機能面で規定されるものは、異なるゼラチン適用時間を示す。トランスウェルタイプ支持体に接種された線維芽細胞およびHUVEC細胞の場合には、これらの細胞が走化性アッセイで機能的に活性な条件下において、寿命は細胞の接種後30分~1時間である。浸潤アッセイの場合、寿命は1~24時間である。例3:走化性/浸潤アッセイ用に即時に使用できる細胞系を保存および輸送する方法1‐ゼラチン調製使用濃度溶解しうる最大濃度:10で直接的に、用いられる細胞タイプに対応した培地例えば、線維芽細胞の場合DMEM1g/LグルコースまたはHUVEC内皮細胞の場合EBM培地に50°Cで溶解した、A型豚皮ゼラチンを用いる。本例では、粉末ゼラチン2.5gを秤量し、それをDMEM培地1g/Lグルコース100mLで溶解させる。保存および輸送中の細胞生存率を高めるために、25mMHEPESをコンディショニング培地へ加える。それを0.22μm孔フィルター濾過で直ちに加熱しながら滅菌する。次いで、それを牛胎児血清細胞タイプに応じたパーセンテージおよびペニシリン/ストレプトマイシン/L‐グルタミン完全培地で補充する。最後に、それをその使用まで4°Cで保存する。2‐非対称支持体における細胞培養物の調製被覆に際して、細胞を接種する12時間前、インサート3または8μm径のFluoroblock系を対応サイズのウェルへ入れ、PBSで希釈された対応マトリックスコラーゲン、フィブロネクチン、ビトロネクチンの溶液を各インサートの繊維の上面および下面へ入れ、それを細胞培養器湿度90、5CO2中で37°Cにする。その使用前に、過剰の被覆溶液を上面から吸引し、それを培養器に15~30分間入れ、細胞を培養タイプに応じた密度5×104~1×105細胞/cm2で接種する。非対称支持体をマトリックスで被覆しないならば、細胞をフィルターに直接接種する。このタイプのアッセイでは、細胞接種および付着時間30分~1時間中に、Fluoroblock系の下部区画に培地を入れる必要はない。対応試験を接種細胞の一部で行い、室温でそれらを維持するために残部へゼラチンを適用する。これらのコントロールから細胞系の機能状態を調べられる。3‐ゼラチン適用ゼラチン溶液を完全に液化し、培養温度37°Cで平衡化するまで、37°Cで培養浴に入れる。次いで、培地を各インサートの上部区画から除去し、それを本例では無血清培地で洗浄する。次いで、2.5液体ゼラチン300μLを上部区画に適用し、それをフローフード中で2~3時間かけて固化させる。次いで、700μLを下部区画に適用し、フローフード中で固化したら、それを室温20~25°Cで保存する。ゼラチンが固化したら、プレートをパラフィルムで密封し、それらが用いられる最長4日後まで室温で保つ。4‐ゼラチン除去固定培養物の使用が必要なときは、ゼラチンを完全に液化するまで、セルインキュベーター内37°C、湿度90および5CO2で3~4時間かけて、固体ゼラチン状態でプレートをインキュベートする。次いで、それを両区画から吸引により除去し、培養物を37°Cで平衡化した無血清培地で洗浄する。この時点で、走化性/浸潤アッセイを行うための培地を調製する。走化性アッセイ24h走化性では、コンディショニング培地中で保持されなかった無コンディショニング培地HUVEC細胞の応答を、コンディショニング培地で72時間保たれたHUVEC細胞の応答と比較する。両ケースとも、細胞を完全EBM培地成長因子および10牛胎児血清含有で刺激したコントロール。無刺激細胞コントロール-は下部での補充なしにEBMで維持した。図1で示されるように、ゼラチン中で維持された細胞は走化性刺激に応答しうる図中コントロール。この結果は、本発明で開示されたゼラチン中の保存方法が:1その機能状態に影響を与えることなく、室温で3日までHUVEC系を固定できること、および2ゼラチンが除去されると、走化性試験が行えることを示している。