"ラクトバチルスヘルベティカスLactobacillushelveticusに属する乳酸菌MSC003株受託番号NITEP-1026。請求項1に記載の乳酸菌株の培養物。請求項2に記載の培養物を炭素数1~3のアルコールを用いて抽出する工程を経て得られる抽出組成物。請求項1に記載の乳酸菌株を用いて発酵する工程を用いて製造された食品組成物。請求項2に記載の培養物及び/又は請求項3に記載の抽出組成物を有効成分として含有することを特徴とする、抗菌剤。食品、動物飼料、化粧品、医薬品及び洗浄剤よりなる群より選ばれる少なくとも1つの製品の保存剤として用いられる、請求項5に記載の抗菌剤。pH5以下に調整されてなる、請求項5又は6に記載の抗菌剤。上述の特許文献1及び非特許文献1の如く、乳酸菌が産生する物質は、その多くがグラム陽性菌に対して有効であるものの、大腸菌等のようなグラム陰性菌に対して有効なものはほとんど知られていなかった。そこで、本発明では、グラム陰性菌に対しても有効な抗菌性物質を産生する新規な乳酸菌を提供することを目的とする。本発明の本発明者らは、グラム陰性菌に対しても有効な抗菌性物質を産生する新規な乳酸菌の探索を行なった結果、自然界や発酵食品に広く分布しているラクトバチルスヘルベティカスLactobacillushelveticusに属する新規な乳酸菌MSC003株が、大腸菌をはじめ多くのグラム陰性菌に対して抗菌性を示す物質を産生することを見出し、本発明を完成させるに至った。即ち、本発明の乳酸菌株以下、本菌株という。は、ラクトバチルスヘルベティカスLactobacillushelveticusに属する新規な乳酸菌MSC003株受託番号NITEP-1026である。本菌株乳酸菌MSC003株、受託番号NITEP-1026は、後述の如く、大腸菌をはじめ多くのグラム陰性菌に対する抗菌性物質を産生する。本発明は、本菌株の培養物以下、本培養物という。も提供する。本発明は、本培養物本菌株の培養物を炭素数1~3のアルコールを用いて抽出する工程を経て得られる抽出組成物以下、本抽出組成物という。も提供する。本発明は、本菌株を用いて発酵する工程を用いて製造された食品組成物以下、本食品組成物という。も提供する。本発明は、本培養物及び/又は本抽出組成物を有効成分として含有することを特徴とする抗菌剤以下、本抗菌剤という。も提供する。本抗菌剤は、食品、動物飼料、化粧品、医薬品及び洗浄剤よりなる群より選ばれる少なくとも1つの製品の保存剤として好適に使用できる。また、本抗菌剤は、pH5以下に調整されてもよい。本発明の新規な乳酸菌株本菌株は、ラクトバチルスヘルベティカスLactobacillushelveticusに属する新規な乳酸菌MSC003株受託番号NITEP-1026である。本菌株であるラクトバチルスヘルベティカスLactobacillushelveticusに属する乳酸菌MSC003株受託番号NITEP-1026は、自然界や発酵食品に広く分布しているラクトバチルスヘルベティカスLactobacillushelveticusに属する乳酸菌から分離されたものである。本菌株は、以下に示す菌学的性質を有する。これらの菌学的性質は、乳酸菌の科学と技術学会出版センター、1996年及びBergey’sManualofSystematicBacteriologySecondEdition2009年に記載の方法に準拠し検査した。以上の特徴をBergey’sManualofSystematicBacteriologySecondEdition2009年を参照して近縁菌種を検索した結果、本菌株はラクトバチルスヘルベティカスLactobacillushelveticusの特徴を示した。しかし、アピ50CHシスメックスビオメリュー社製を用いた糖類資化性試験においてD-セロビオース及びD-スクロースの結果が基準株とは異なる非典型的性質を示した。また、表1には示していないが、通常のラクトバチルスヘルベティカスLactobacillushelveticusとは異なり、10還元脱脂乳培地では乳酸の生成が遅く、酵母エキスを0.5添加することで改善されるという特徴的な性質を示した。遺伝学的性質は以下の如くである。本菌株について16SrDNAの塩基配列1500ベースペアbpを解読し、アポロンDBBA5.0データベースで近縁菌種の相同性検索を行った結果、登録されているラクトバチルスヘルベティカスLactobacillushelveticusJCM1120株の16SrDNAの塩基配列と99.3の相同率を示した。また、国際塩基配列データベースではラクトバチルスヘルベティカスLH株、ラクトバチルスヘルベティカスLH5株およびラクトバチルスヘルベティカスIMAU50001株と100.0の相同率を示した。従って、本菌株をラクトバチルスヘルベティカスLactobacillushelveticusと同定した。一方、上述した非特許文献1に記載されたラクトバチルスヘルベティカス481株が産生するバクテリオシンのヘルベティシンJHelveticinJの性質と、本菌株乳酸菌MSC003株が産生する抗菌物質の性質と、は大きく異なる。即ち、aヘルベティシンJは近縁種であるラクトバチルスヘルベティカスLactobacillushelveticus、ラクトバチルスブルガリカスLactobacillusbulgaricus及びラクトバチルスラクティスLactobacilluslactisの限られた菌株に対してのみ抗菌活性を示し、抗菌スペクトルが狭いこと本菌株乳酸菌MSC003株が産生する抗菌物質は抗菌スペクトルが広い。bトリプシンやペプシンなどのプロテアーゼタンパク分解酵素により失活すること本菌株乳酸菌MSC003株が産生する抗菌物質はプロテアーゼにより失活しない。c100°C、30分間の加熱処理により失活すること本菌株乳酸菌MSC003株が産生する抗菌物質は該加熱処理により失活しない。これらa、b及びc等のヘルベティシンJの性質が、本菌株乳酸菌MSC003株が産生する抗菌物質とは大きく異なる。したがって、ラクトバチルスヘルベティカスLactobacillushelveticusのこれまで知られている菌株とは明確に異なる菌株であると認められ、ラクトバチルスヘルベティカスLactobacillushelveticusMSC003株と命名した。このラクトバチルスヘルベティカスLactobacillushelveticusMSC003株は、千葉県木更津市かずさ鎌足2-5-8に住所を有する独立行政法人製品評価技術基盤機構特許微生物寄託センターNPMDに平成23年1月6日寄託日付で上記名称識別の表示:LactobacillushelveticusMSC003で寄託されており、受託番号はNITEP-1026である。本菌株乳酸菌MSC003株は、上述したように、天然に存する乳酸菌から分離されたものであり、本菌株乳酸菌MSC003株それ自身及びその培養物についてもヒトを含む動物に対する毒性はなく、ヒトを含む動物に対して経口摂取や皮膚への塗布を安全に行うことができる。本菌株乳酸菌MSC003株は、大腸菌をはじめ多くのグラム陰性菌に対する抗菌性物質を産生する。該抗菌性物質は、後に詳述する表2MSC003の抗菌スペクトルに示す通り、サルモネラ血清型エンテリティディス、サルモネラ血清型ティフィムリウム、大腸菌、大腸菌O-157、コレラ菌及びシュードモナスフラギなお、表2中では、記載を容易にするため、サルモネラ血清型エンテリティディス及びサルモネラ血清型ティフィムリウムの血清型を省略している。等のようなグラム陰性菌に対して抗菌性を示すと共に、ボツリヌス菌A型、ボツリヌス菌B型、ボツリヌス菌F型、スポロゲネス菌、黄色ブドウ球菌、メチシリン耐性ブドウ球菌、セレウス菌及びリステリアモノサイトゲネス菌等のようなグラム陽性菌に対しても抗菌性を示す。加えて、本菌株乳酸菌MSC003株は、pH4.5、121°Cで15分間の処理条件下で熱安定性を示す。そして、本菌株乳酸菌MSC003株が産生する抗菌性物質は、上述したグラム陰性菌に対して有効であると共に次のような特徴を有する。イプロテアーゼで消化されない。ロpH5以下例えば、pH2~5で安定性を示す。本菌株乳酸菌MSC003株の分離菌株の保存は、MRSブイヨンで培養した培養菌液を10還元脱脂乳培地に0.5量程度添加し、そのまま-20°Cから-80°Cで冷凍することで保存できる。そして、使用にあたっては、菌株を含む保存物をMRSブイヨンに1量程度添加し、37°Cで24時間保つことで培養することができる。本菌株乳酸菌MSC003株の培養に使用することのできる培地としては、本菌株が増殖し得るものであれば任意のものでよい。例えば、使用可能な培地としては、炭素源、窒素源、無機塩類、ビタミン、アミノ酸等を含む通常用いられる培地液体培地、固体培地などであるが、乳酸菌の培養に適する培地を用いてもよい。乳酸菌の培養に適する培地としては、例えば、MRSブイヨン、MRS寒天培地、BCP加プレートカウント培地、酵母エキスを0.5量加えた10還元脱脂乳培地等が挙げられる。本菌株乳酸菌MSC003株の培養は、とくに嫌気的条件下で行う必要はなく、通常の好気的条件下で培養することができる。培養条件は特に限定はないが、温度は30~40°C、pHは6.0~7.0、培養時間は24~72時間の範囲とされてもよい。本培養物は、本菌株ラクトバチルスヘルベティカスLactobacillushelveticusに属する乳酸菌MSC003株受託番号NITEP-1026の培養物である。本菌株乳酸菌MSC003株の培養は、上述したような条件下にて行うことができ、その培養物本培養物は本菌株乳酸菌MSC003株が産生する前記の抗菌性物質を含有する。従って、本培養物自身も、それが含有する該抗菌性物質に基づくグラム陽性菌及びグラム陰性菌に対する抗菌性を有する。また、本培養物としては、本菌株を液状または固形培地で培養した培養物全体を用いることもできるが、必要に応じて培養物の一部を分取した分取物としてもよい。分取物としては、培養液菌体含有、コロニー、培養上清菌体不含等を例示できる。そして、本培養物として培養上清を用いる場合には、培養液から菌体を遠心分離等によって分離し、培養上清液のpHを炭酸ナトリウム、水酸化ナトリウム、水酸化カリウム等によりpHを5以下に調整例えば、pH2~5程度して、本抗菌剤として利用することもできる。更に、培養上清液の粗精製物を本抗菌剤として用いることもでき、この粗精製物は、例えば、培養上清液をイオン交換、限外濾過、逆浸透、ゲル濾過等の方法で抗菌活性を有する画分を取得することで調製することもできる。本抽出組成物は、本培養物本菌株の培養物を炭素数1~3のアルコールを用いて抽出する工程を経て得られる抽出組成物である。本培養物に含まれる前記抗菌性物質は、本培養物と炭素数1~3のアルコールとを接触させると、アルコール層に抽出されるので、本培養物からアルコール層に抽出される抽出画分を含む本抽出組成物は前記抗菌性物質を含有する。従って、本抽出組成物も、それが含有する前記抗菌性物質に基づくグラム陽性菌及びグラム陰性菌に対する抗菌性を有する。ここに用いる炭素数1~3のアルコールとしては、メチルアルコール、エチルアルコール、n-プロピルアルコール、イソプロピルアルコールを例示できるが、本抽出組成物に残留する場合の低毒性を考慮すれば、エチルアルコールが好ましい。また、炭素数1~3のアルコールを接触させ抽出する本培養物としては、本乳酸菌株を培養した培養物そのものでもよいが、本培養物に含まれる前記抗菌性物質は本培養物を遠心分離や静置分離した際に得られる上清に含まれるので、本培養物を遠心分離や静置分離して生じる上清を該アルコール層と接触させるようにしてもよい。本抽出組成物は、本培養物を炭素数1~3のアルコールを用いて抽出する工程を経て得られるものであり、本培養物から抽出された前記抗菌性物質を含有するアルコール層は、本抽出組成物中にアルコールが含まれてもよい場合には、アルコールを留去せず、そのままアルコールを含んだ状態の本抽出組成物としてもよい。そして、本培養物から抽出された前記抗菌性物質を含有するアルコール層は、それが含有するアルコールの一部又は全部を留去したり、及び/又は、それが含有する水分の一部又は全部を留去して本抽出組成物としてもよい。さらに、本培養物から抽出された前記抗菌性物質を含有するアルコール層は、乾燥固化して本抽出組成物としてもよい。また、本抽出組成物は、水に安定して溶解するので、水溶液としておくこともできる。本抽出組成物に含まれる前記抗菌性物質はpH5以下で安定した抗菌性を発揮するのでpH5以下例えば、pH=2~5の水溶液としてもよい。本抽出組成物は、上述の通り、本培養物を炭素数1~3のアルコールを用いて抽出する工程を経て得られるものであればよく何ら限定されるものではないが、例えば、本培養物にエチルアルコールを接触させる接触ステップと、接触ステップにより培養物と接触したエチルアルコール層を回収する回収ステップと、回収ステップにより回収されたエチルアルコール層のエチルアルコールを留去し抽出組成物とする留去ステップと、を含んでなる製造方法により製造されうる。接触ステップでは、本培養物にエチルアルコールを接触させる。接触ステップにおける本培養物体積に対するエチルアルコール体積の比率エチルアルコール体積/本培養物体積は、あまり小さいと前記抗菌性物質がエチルアルコール層に十分抽出されず、逆にあまり多いとエチルアルコール層が多すぎて回収ステップや留去ステップを実施することが大変になるため、これらを両立する範囲とされてもよく、特に限定されるものではないが、通常、1~10とされてもよい。また、接触ステップにおける本培養物及びエチルアルコールの温度は、あまり低いと凍結により前記抗菌性物質がエチルアルコール層に十分抽出されない恐れがあり、逆にあまり高いと前記抗菌性物質が変性を起こす恐れが生じるので、これらを両立する範囲とされてもよく、特に限定されるものではないが、通常、1°C~15°Cとされてもよい。そして、接触ステップにおける本培養物及びエチルアルコールの接触時間は、あまり短いと前記抗菌性物質がエチルアルコール層に十分抽出されず、逆にあまり長いと時間がかかりすぎるので、これらを両立する範囲とされてもよく、特に限定されるものではないが、通常、4時間~24時間とされてもよい。また、接触ステップにおいてエチルアルコール層と接触させる本培養物としては、本乳酸菌株を培養した培養物そのものでもよいが、本培養物に含まれる前記抗菌性物質は本培養物を遠心分離や静置分離した際に得られる上清に含まれるので、本培養物を遠心分離や静置分離して生じる上清を接触ステップにおいてエチルアルコール層と接触させるようにしてもよい。回収ステップでは、接触ステップにより培養物と接触したエチルアルコール層を回収する。接触ステップにおいて培養物と接触したエチルアルコール層は、培養物層とは液-液分離するので比重差を利用して遠心分離や静置分離の後に、分液することでエチルアルコール層を回収できる上層に透明なエチルアルコール層、下層に白色の培養物層が形成される。かかるエチルアルコール層には、本菌株が産生する前記の抗菌性物質が含まれている。留去ステップでは、回収ステップにより回収されたエチルアルコール層のエチルアルコールを留去し本抽出組成物とする。回収ステップで回収されたエチルアルコール層からエチルアルコールを留去するには、エチルアルコールを蒸発させ除去すればよく、常圧下又は減圧下でエチルアルコールを蒸発除去してもよい前記抗菌性物質を含む本抽出組成物が高温により劣化することを防止又は減少させることからは減圧下で行うようにしてもよい。。また、本抽出組成物中にエチルアルコールが含まれてもよい場合には、エチルアルコールを完全に留去せず、エチルアルコールを含んだ状態の本抽出組成物としてもよい。本抽出組成物は、水に安定して溶解するので、水溶液としておくこともできる。本抽出組成物に含まれる前記抗菌性物質はpH5以下で安定した抗菌性を発揮するのでpH5以下例えば、pH=2~5の水溶液としてもよい。本食品組成物は、本菌株を用いて発酵する工程を用いて製造された食品組成物である。本菌株乳酸菌MSC003株は、本菌株が属する乳酸菌株及び前記抗菌性物質の特徴に基づき、特に食品分野へ好適に用いることが可能である。即ち、本菌株は、本菌株を用いて発酵原料を発酵する工程を用いて発酵食品を製造するために使用することができる。なお、本菌株は、他の食品用微生物と組み合わせて発酵させることができる。発酵原料としては、例えば、野菜、果物、乳等の発酵原料があげられ、これらを本菌株を用いて発酵させることで、本食品組成物である漬物、味噌、醤油、乳製品、ヨーグルト等を得ることができる。例えば、野菜、果物、乳等の発酵原料に本菌株を添加する場合には、原料1グラムあたり104個~107個1万個~1千万個の割合で本菌株を添加し、30~40°Cで発酵させるようにしてもよい。本抗菌剤は、本培養物及び/又は本抽出組成物を有効成分として含有することを特徴とする抗菌剤である。本培養物及び本抽出組成物に含まれる前記抗菌性物質に基づく抗菌性が本抗菌剤において発揮され、本抗菌剤が含む前記抗菌性物質の動物ヒトを含むに対する安全性から本抗菌剤は食品、動物飼料、化粧品、医薬品及び洗浄剤よりなる群より選ばれる少なくとも1つの製品の保存剤として好適に用いられる。なお、ここにいう化粧品、医薬品及び洗浄剤としては口腔等のような体腔に適用されるものを含み、そして洗浄剤には、身体用洗浄剤、手洗い用洗浄剤、衣類用洗浄剤、住居用洗浄剤及び医療機器用洗浄剤等が含まれる。本抗菌剤の該製品への配合量は該製品の種類などにより適宜設定すればよいが、例えば、本培養物及び/又は本抽出組成物の量に換算して、1~100重量の割合とされてもよい。そして、本抗菌剤に含まれる前記抗菌性物質はpH5以下で安定した抗菌性を発揮するので本抗菌剤はpH5以下例えば、pH=2~5に調整されてもよい。以下、実施例により本発明を更に詳細に説明する。なお、実施例において使用するMSC003株は、上述の如く、自然界や発酵食品に広く分布しているラクトバチルスヘルベティカスから分離されたものであり、ラクトバチルスヘルベティカスLactobacillushelveticusに属する乳酸菌MSC003株として2011年1月6日寄託日付けで独立行政法人製品評価技術基盤機構特許微生物寄託センターNPMD千葉県木更津市かずさ鎌足2-5-8に受託番号NITEP-1026として寄託されている。実験例1:MSC003株の抗菌スペクトル試験対象菌の培養試験の対象菌を準備し、各々の対象菌を液体培地で培養する。対象菌としては、表2に示す通り、グラム陽性菌として、ボツリヌス菌A型、ボツリヌス菌B型、ボツリヌス菌F型、スポロゲネス菌、黄色ブドウ球菌、メチシリン耐性ブドウ球菌、セレウス菌及びリステリアモノサイトゲネス菌を用い、グラム陰性菌として、サルモネラ血清型エンテリティディス、サルモネラ血清型ティフィムリウム、大腸菌、大腸菌O-157、コレラ菌及びシュードモナスフラギを用いたなお、表2中では、記載を容易にするため、サルモネラ血清型エンテリティディス及びサルモネラ血清型ティフィムリウムの血清型を省略している。。これらの対象菌のうちボツリヌス菌A型、ボツリヌス菌B型及びボツリヌス菌F型の培養には、TPGYTrypticasePeptoneGlucoseYeastextractブイヨンを用い、その他のスポロゲネス菌、黄色ブドウ球菌、メチシリン耐性ブドウ球菌、セレウス菌及びリステリアモノサイトゲネス菌、サルモネラ血清型エンテリティディス、サルモネラ血清型ティフィムリウム、大腸菌、大腸菌O-157、コレラ菌及びシュードモナスフラギの培養には、普通ブイヨンを用い、いずれも35°Cで24時間培養した。試験液の調製阻止円を評価するための試験液の調製方法を図1を参照して説明する。予め、MSC003株をMRSブイヨン乳酸菌用の液体培地を用いて37°Cで24時間の3回培養し前培養、前培養液を得た。そして、市販の還元脱脂粉乳と酵母エキスを蒸留水に溶解し、0.5酵母エキスを含む10還元脱脂乳培地を調製した。調製した0.5酵母エキスを含む10還元脱脂乳培地100mlにMSC003株の前培養液1mlを接種した。MSC003株の前培養液を接種した0.5酵母エキスを含む10還元脱脂乳培地を37°Cで72時間培養した。培養した培養液を20分間遠心分離3000Gした。遠心分離した上清を分取した。分取した上清50ml約10°Cに500mlのエチルアルコール約10°Cを徐々に加えながら混合し、その後、その混合物を10°Cのまま1晩静置した。1晩静置した該混合物を20分間遠心分離3000Gした。遠心分離した該混合物からエチルアルコール層を分液し回収した。分液したエチルアルコール層をロータリエバポレーターにかけ、減圧下約45°Cにてエチルアルコールを留去した。エチルアルコールを留去し残留した画分約1mlに蒸留水を加え溶解させ10mlとした。これに10N-水酸化ナトリウム水溶液を添加してpH4.5に調整し、試験液とした。抗菌活性測定用寒天培地の調製対象菌それぞれの培養液を、約50°Cに保たれた活性測定用寒天培地予め加熱殺菌し溶解させ調製したに1接種し混合して抗菌活性測定用寒天培地を調製した。なお、活性測定用寒天培地として、対象菌のうちボツリヌス菌A型、ボツリヌス菌B型及びボツリヌス菌F型には、TPGYTrypticasePeptoneGlucoseYeastextract培地を用い、その他のスポロゲネス菌、黄色ブドウ球菌、メチシリン耐性ブドウ球菌、セレウス菌及びリステリアモノサイトゲネス菌、サルモネラ血清型エンテリティディス、サルモネラ血清型ティフィムリウム、大腸菌、大腸菌O-157、コレラ菌及びシュードモナスフラギには、普通寒天nutrientagarを用いた。対象菌の培養液を接種した抗菌活性測定用寒天培地それぞれ20mlを、直径9cmのシャーレに注入し、抗菌活性測定用寒天培地を固化させた。各シャーレ内で固化した抗菌活性測定用寒天培地に直径約6mmの穴ほぼ直円柱状をあけたピペット等を用いて該穴を形成した。抗菌活性の評価抗菌活性測定用寒天培地の穴ウエルに50μlの試験液を注入した。その後、穴ウエルに50μlの試験液を注入したシャーレそれぞれを4°Cで2時間静置した後、35°Cで24時間又は48時間培養した。なお、対象菌のうちボツリヌス菌A型、ボツリヌス菌B型及びボツリヌス菌F型は、アネロパック登録商標を用い嫌気ジャーにて培養し、他の対象菌は、恒温器内にて通常通り培養した。培養後、穴ウエルの周囲に形成された透明な阻止円の直径mmを測定した。阻止円の直径は、抗菌活性測定用寒天培地の穴ウエルが直径6mmであるので、6mmを超えれば抗菌性を示している。測定した阻止円の直径mmを表2に表す。表2に示すように、ボツリヌス菌A型、ボツリヌス菌B型、ボツリヌス菌F型、スポロゲネス菌、黄色ブドウ球菌、メチシリン耐性ブドウ球菌、セレウス菌及びリステリアモノサイトゲネス菌のいずれのグラム陽性菌に対しても、そしてサルモネラ血清型エンテリティディス、サルモネラ血清型ティフィムリウム、大腸菌、大腸菌O-157、コレラ菌及びシュードモナスフラギのいずれのグラム陰性菌に対しても、MSC003株の培養物からエチルアルコールにて抽出した成分は十分な抗菌性を示した。抗菌性のpHによる変化測定上述の試験液の調整において、エチルアルコールを留去し残留した画分約1mlに蒸留水を加え溶解させ10mlとした。これに10N-水酸化ナトリウム水溶液の添加量を変えてpHを4.0~7.0の間で段階的に変化pHを0.5刻みで変化させたものを試験液として、対象菌を大腸菌グラム陰性菌及びリステリアモノサイトゲネス菌グラム陽性菌として上と同様に試験した。結果を表3に示す。表3から明らかなように、MSC003株の培養物からエチルアルコールにて抽出した成分は、pH4~5の範囲にて大腸菌グラム陰性菌及びリステリアモノサイトゲネス菌グラム陽性菌のいずれにも抗菌性を示すが、pH5.5以上においては、大腸菌グラム陰性菌及びリステリアモノサイトゲネス菌グラム陽性菌のいずれにも抗菌性を示さなかった。なお、pH4以下の試験液においては乳酸に由来する抗菌作用により阻止円が形成され、本試験法ではMSC003株の産生する抗菌性物質による抗菌作用と区別できないため、表3にはpH4以下の試験結果を示していない。抗菌性の酵素処理による影響測定上述の試験液の調整において、エチルアルコールを留去し残留した画分約1mlに蒸留水を加え溶解させ10mlとした。これに2N-塩酸水溶液又は10N-水酸化ナトリウム水溶液を添加して、表4に示す各種プロテアーゼの至適pHに調整した。各種プロテアーゼを5mg/mlの濃度で加え、表4に示す温度で1時間反応させた後、85°Cで30分間加熱して酵素を失活させた。2N-塩酸水溶液又は10N-水酸化ナトリウム水溶液を用いて、再度、pH4.5に調整したものを試験液とした。大腸菌を対象として上と同様に試験した。なお、プロテアーゼとしては、表4に示すとおり、ペプシン、プロナーゼE、トリプシン、プロティナーゼK、プロテアーゼ、α-キモトリプシンを用いた。また、プロテアーゼの代わりに蒸留水を添加したものをコントロール対照とし、抗菌性を示す物質が過酸化水素に基づくか否かを確認するためにカタラーゼを5mg/ml添加して実験を行った。表4中の抗菌活性は、コントロールの阻止円の直径mm-6mmに対する各実験例ペプシン、プロナーゼE、トリプシン、プロティナーゼK、プロテアーゼ、α-キモトリプシン、カタラーゼの阻止円の直径mm-6mmの割合として示した。コントロールの阻止円の直径mm-6mm及び各実験例ペプシン、プロナーゼE、トリプシン、プロティナーゼK、プロテアーゼ、α-キモトリプシン、カタラーゼの阻止円の直径mm-6mmにおける2つの6mmは抗菌活性測定用寒天培地の穴ウエルの直径6mmを意味しているので、阻止円の直径mmから6mmを減じた数値は抗菌性の強さを示す。即ち、上記のような抗菌活性によって、各実験例ペプシン、プロナーゼE、トリプシン、プロティナーゼK、プロテアーゼ、α-キモトリプシン、カタラーゼにおける処理によって、これらの処理がされていないコントロール対照に対して抗菌作用がどの程度影響を受けているかを見ることができる。表4に示す実験結果から明らかなように、MSC003株の培養物に含まれる抗菌性物質は、ペプシン、プロナーゼE、トリプシン、プロティナーゼK、プロテアーゼ、α-キモトリプシンのプロテアーゼにより消化されず抗菌活性は全て100であり、酵素の処理により抗菌作用は影響を受けていない。、過酸化水素に基づくものでもないことが明らかになったカタラーゼを添加しても抗菌活性は100であり影響を受けていない。。本抗菌剤の保存剤としての使用例以下、本抗菌剤を食品、動物飼料、化粧品、医薬品及び洗浄剤の製品の保存剤として用いる場合の処方例を示す。なお、これら処方例における本抗菌剤は、上述したpH4.5に調整された試験液と同様に調製したものを用いた。処方例1本抗菌剤を白菜の漬物食品の保存剤として用いる処方例白菜10kg食塩0.3kg赤唐辛子10本昆布50cm柚子2個本抗菌剤0.5kg処方例2本抗菌剤を豚用飼料動物飼料の保存剤として用いる処方例とうもろこし60kgライ麦10kg大豆粕22kg米ぬか粕1.5kg炭酸カルシウム0.5kgリン酸カルシウム0.5kg食塩0.5kg本抗菌剤5kg処方例3本抗菌剤を皮膚用軟膏医薬品の保存剤として用いる処方例ワセリン20kgステアリルアルコール10kgモノステアリン酸グリセリル1kg硬化ヒマシ油2kgグリセリン5kg1,3-ブチレングリコール5kgカルボキシビニルポリマー1kg香料1kg本抗菌剤10kg精製水45kg処方例4本抗菌剤を洗口剤洗浄剤の保存剤として用いる処方例エチルアルコール10kgグリセリン10kgサッカリンナトリウム20gクエン酸0.2kgハッカ0.5kg香料0.3kg本抗菌剤10kg精製水49kg処方例5本抗菌剤を除菌剤洗浄剤の保存剤として用いる処方例エチルアルコール20kg本抗菌剤20kgクエン酸0.5kg香料0.5kg精製水59kg"