"米糠又は玄米由来のタンパク質を加水分解してなるペプチドを有効成分として含有するジペプチジルペプチダーゼ-IV阻害剤。前記ペプチドが、Xaa-Proで示されるジペプチドである請求項1記載のジペプチジルペプチダーゼ-IV阻害剤。前記ペプチドが、Ile-Pro及び/又はLeu-Proで示されるジペプチドである請求項1又は2記載のジペプチジルペプチダーゼ-IV阻害剤。アルカリ溶液を用いて米又は玄米から抽出した米糠又は玄米由来のタンパク質を、アスペリギルスオリゼ由来のタンパク質分解酵素を用いて分解することを特徴とする請求項1~3のいずれか記載のジペプチジルペプチダーゼ-IV阻害剤の製造方法。本発明は上記課題を解決するためになされたものであり、長期に連続して使用しても安全であり、小腸からの吸収性に優れ、DPP-IV阻害作用が強く、しかも血中での安定性に優れたDPP-IV阻害剤及びその製造方法を提供することを目的とするものである。上記課題は、米糠又は玄米由来のタンパク質を加水分解してなるペプチドを有効成分として含有するジペプチジルペプチダーゼ-IV阻害剤を提供することによって解決される。このとき、前記ペプチドが、Xaa-Proで示されるジペプチドであることが好適であり、前記ペプチドが、Ile-Pro及び/又はLeu-Proで示されるジペプチドであることが好適である。また、このとき、アルカリ溶液を用いて米又は玄米から抽出した米糠又は玄米由来のタンパク質を、アスペリギルスオリゼ由来のタンパク質分解酵素を用いて分解することを特徴とするジペプチジルペプチダーゼ-IV阻害剤の製造方法を提供することも本発明の好適な実施態様である。本発明により、DPP-IV阻害剤及びその製造方法を提供することができる。本発明のDPP-IV阻害剤は、米糠又は玄米由来のタンパク質を加水分解してなるペプチドを有効成分とするもので、長期に連続して使用しても安全であり、小腸からの吸収性に優れ、DPP-IV阻害作用が強く、しかも血中での安定性に優れている。したがって、本発明のDPP-IV阻害剤は、血糖値を容易に管理することができ、糖尿病の予防改善に有用である。また、本発明のDPP-IV阻害剤は、米糠タンパク又は玄米タンパクをタンパク質分解酵素で分解して製造されるので、効率よく大量に生産することができる。本発明のDPP-IV阻害剤は、米糠又は玄米由来のタンパク質を加水分解してなるペプチドを有効成分として含有するものである。米糠又は玄米由来のタンパク質を加水分解してなるペプチドを有効成分として含有することにより、長期に連続して使用しても安全であり、小腸からの吸収性に優れ、DPP-IV阻害作用が強く、しかも血中での安定性に優れたDPP-IV阻害剤を得ることができる。以下、本発明において、米糠又は玄米由来のタンパク質を加水分解してなるペプチドを米糠由来加水分解物又は玄米由来加水分解物と呼ぶことがある。本発明のDPP-IV阻害剤に含まれるペプチドとしては、Xaa-Proで示されるジペプチドであることが好ましい。本発明において、Xaaとは任意のアミノ酸を示す。このように、本発明のDPP-IV阻害剤がXaa-Proで示されるジペプチドを含有することにより、DPP-IV阻害効果を増加させることができ、しかも血中での安定性の点でも優れるので好ましい。Xaa-Proで示されるジペプチドとしては、Ile-Proイソロイシン-プロリン、Met-Proメチオニン-プロリン、Val-Proバリン-プロリン、Arg-Proアルギニン-プロリン、Thr-Proスレオニン-プロリン、Leu-Proロイシン-プロリン、Lys-Proリシン-プロリン、His-Proヒスチジン-プロリン、Tyr-Proチロシン-プロリン、Phe-Proフェニルアラニン-プロリン、Trp-Proトリプトファン-プロリン、Pro-Proプロリン-プロリン、Ser-Proセリン-プロリン、Ala-Proアラニン-プロリンなどが挙げられる。中でも、本発明のDPP-IV阻害剤に含まれるペプチドとしては、Ile-Proイソロイシン-プロリン、Met-Proメチオニン-プロリン、Val-Proバリン-プロリン、Arg-Proアルギニン-プロリン、Thr-Proスレオニン-プロリン、及びLeu-Proロイシン-プロリンからなる群から選択される少なくとも1種のXaa-Proで示されるジペプチドであることが好ましく、Ile-Proイソロイシン-プロリン及び/又はLeu-Proロイシン-プロリンで示されるジペプチドであることがより好ましく、Ile-Proイソロイシン-プロリンで示されるジペプチドであることが更に好ましい。また、Val-Pro-Glyバリン-プロリン-グリシンのようなトリペプチドを含有させていてもよい。また、後述する実施例における市販ジペプチドを用いたDPP-IV阻害活性の測定結果から分かるように、特定のXaa-Proで示されるジペプチドを含有することにより、DPP-IV阻害活性が強くなることが本発明者らにより確認された。したがって、DPP-IV阻害活性を有するIle-Proイソロイシン-プロリン、Met-Proメチオニン-プロリン、Val-Proバリン-プロリン、Arg-Proアルギニン-プロリン、Thr-Proスレオニン-プロリン、Leu-Proロイシン-プロリン、Lys-Proリシン-プロリン、His-Proヒスチジン-プロリン、Tyr-Proチロシン-プロリン、Phe-Proフェニルアラニン-プロリン、Trp-Proトリプトファン-プロリン、Pro-Proプロリン-プロリン、Ser-Proセリン-プロリン、及びAla-Proアラニン-プロリンからなる群から選択される少なくとも1種のXaa-Proで示されるジペプチドが本発明の実施態様である。中でも、Ile-Proイソロイシン-プロリン、Met-Proメチオニン-プロリン、Val-Proバリン-プロリン、Arg-Proアルギニン-プロリン、Thr-Proスレオニン-プロリン、及びLeu-Proロイシン-プロリンからなる群から選択される少なくとも1種のXaa-Proで示されるジペプチドが好適である。本発明のDPP-IV阻害剤は、米又は玄米から抽出した米糠又は玄米由来のタンパク質を原料とするが、米としては、品種、種類、精米方法に限定されず、ジャポニカ米、インディカ米など種々の米を用いることができる。米糠は、通常大量に廃棄されるものであるので、DPP-IV阻害作用に優れることに加え、原料ソースの点でも好ましい。原料として米糠を用いる場合は脂質成分を除去することが好ましい。脱脂の方法としては特に制限されるものではなく、機械搾油、溶剤による抽出方法などを用いることができる。食品に用いられるためには、残留してはならないヘキサンなどの溶剤を用いることは避けるべきであり、かかる観点からは、機械搾油やエタノールを用いた抽出により脂質を除去することが好ましい。本発明のDPP-IV阻害剤に使用される米糠又は玄米由来の加水分解物を製造するには、まず、米糠又は玄米から、米糠タンパク又は玄米タンパクをアルカリ溶液で溶出させる。アルカリ溶液としては、pHを12.5近辺に調整したNaOH水溶液を用い、この溶液に米糠又は玄米などを添加し、40°C~60°Cの温度で撹拌しながら2~5時間程度抽出する。次いで、遠心分離機などの分離手段でろ液とろ過物とに分離し、1~2Nの希塩酸でろ液のpHを4に調整し、タンパク質を沈殿させ、減圧乾燥などで乾燥させて米糠タンパク又は玄米タンパクを得ることができる。タンパク質を得る方法はこれに限定されるものではなく、酵素により糖質、セルロース等を水溶化して得ても良い。得られた米糠タンパク又は玄米タンパクを蒸留水に懸濁し、5NのNaOH水溶液でpHを7.0~8.0に調整した後、タンパク質分解酵素を加え、40°C~50°Cで12~24時間反応を行う。次いで、酵素を失活させ、液体窒素で凍結乾燥して米糠又は玄米由来の加水分解物を得ることができる。タンパク質分解酵素としては、ペプシン、プロテアーゼA、プロテアーゼBなど市販のタンパク質分解酵素を使用することができるが、具体的には、ビオプラーゼSP、デナチームAP、プロテアーゼP、ペプチターゼR、ウマミザイムGなどを挙げることができる。なかでも、アスペルギルスオリゼAspergillusoryzae由来のタンパク質分解酵素は、イソロイシン-プロリンIle-Pro、ロイシン-プロリンLeu-Proなどのジペプチドを容易に導入することができ好ましい。アスペルギルスオリゼ由来のタンパク質分解酵素としては、ペプチターゼ及びプロテアーゼを有する上述の市販のウマミザイムG至適pH8.0、中性付近で有効に作用し、至適温度45°C、及びアスペルギルスオリゼが生産するプロテアーゼを製剤化したデナチームAP至適pH7.0、至適温度50°Cを挙げることができる。これらの酵素を用いることにより、高い阻害作用を示すDPP-IV阻害剤を得ることができる。また、これらの酵素を用いると、加水分解物の収率が60以上を示す点でも好ましい。したがって、アルカリ溶液を用いて米又は玄米から抽出した米糠又は玄米由来のタンパク質を、アスペリギルスオリゼ由来のタンパク質分解酵素を用いて分解するジペプチジルペプチダーゼ-IV阻害剤の製造方法が本発明の好適な実施態様である。本発明のDPP-IV阻害剤は、前述のように、米糠又は玄米由来のタンパク質を加水分解してなるペプチドを有効成分として含有する。DPP-IV阻害剤に含まれる米糠又は玄米由来のタンパク質を加水分解してなるペプチドのピーク分子量が5000以下であることが好ましい。小腸からの吸収性を高めることができる観点から、前記ピーク分子量が2000以下であることがより好ましく、1000以下であることが更に好ましく、300以下であることが特に好ましい。本発明のDPP-IV阻害剤は、50阻害濃度IC50が20mg/ml以下であることが好ましい。50阻害濃度が20mg/mlを超える場合、阻害効果が期待できないおそれがある。50阻害濃度は、15mg/ml以下であることがより好ましく、10mg/ml以下であることが更に好ましく、5mg/ml以下であることが特に好ましい。本発明において、DPP-IV阻害剤に含まれる米糠又は玄米由来のタンパク質を加水分解してなるペプチドの含有量としては特に限定されないが、米糠又は玄米由来の加水分解物1mgあたり、0.01μg以上含有することが好ましく、0.1μg以上含有することがより好ましく、0.5μg以上含有することが更に好ましい。本発明のDPP-IV阻害剤は、例えば経口的に投与して、生体におけるDPP-IVを阻害することにより血糖値を低下させることができる。経口投与に用いる本発明のDPP-IV阻害剤の剤形は、錠剤、カプセル剤、細粒剤、散剤、タブレット剤、トローチ剤、舌下剤、液剤などが可能である。また、本発明のDPP-IV阻害剤は、各種食品、各種飲料に添加して用いることもできるし、サプリメントとして用いてもよい。本発明のDPP-IV阻害剤の経口投与量としては、治療や予防の目的、投与対象の症状、体重、年齢、性別などの諸条件を考慮して適宜決定されるが、通常、成人を対象とした場合、一日あたり、有効成分量として、5mg~5000mg摂取すればよい。本発明のDPP-IV阻害剤は、米糠又は玄米由来のタンパク質を加水分解してなるペプチドを有効成分として含有する。前記ペプチドは、DPP-IV阻害活性を有する高血糖防止剤等として利用可能な、安全性が高く、副作用のない画分であり、数々の医薬品、特定用保健食品、機能性食品等への利用が期待できる。また、本発明のDPP-IV阻害剤は、安価に入手することができるという利点があり、実用上極めて利用価値が高い。以下、実施例を用いて本発明のDPP-IV阻害剤を更に具体的に説明するが、本発明はこれらに限定されるものではない。なお、本発明において、ピーク分子量の測定、DPP-IVの活性測定及び阻害活性測定方法は以下の方法により行った。ピーク分子量の測定ピーク分子量は、ゲル濾過カラムGEヘルスケア社製SuperdexPeptideを用いて分析した。溶媒として、0.15MのNaClを含む50mM酢酸バッファーpH5.5に、米糠由来又は玄米由来加水分解物を10mg/mlの濃度になるように溶解し、その200μlを流速0.7ml/分で上記ゲル濾過カラムに注入する。別途、表1に示す標品の溶出位置をもとに検量線を作成し、215nmの吸光度を測定することによってピーク分子量を求めた。DPP-IVの調製DPP-IVの組み換え体の作出については、メタノール資化性酵母による系での例が報告されているWMetzleretalProteinSci17240250。この方法をもとに、市販されているhumancDNAPCRtemplateを鋳型に、ヒトジペプチジルベプチダーゼ-IV遺伝子をPCRにより増幅し、発現ベクター形質転換酵母を作出し、菌体外発現させた。この培養上清を水に対し透析して得た液をDPP-IV酵素液とした。DPP-IVの活性測定基質として、Alaアラニン-Proプロリン-pNAパラニトロアニリンバッケム社製を使用した。すなわち、あらかじめ37°Cに加温した2mMのAla-Pro-pNAを含む0.1Mトリス-塩酸バッファーpH7.5720μlを、37°Cで加温したホルダーに装着したプラスチックセルに加え、前記酵素液を80μl加え、405nmの1分間当たりの吸光度変化を求めた。1ユニットを1分間あたり1マイクロモルのパラ-ニトロアニリンを遊離させる活性を1ユニットと定義し、405nmにおけるパラ-ニトロアニリンのミリモル分子吸光係数が10.6であることから、当該酵素液の活性を測定したところ、0.29ユニット/mlと見積もられた。DPP-IV阻害率の測定方法基質として上記Ala-Pro-pNAを使用し、酵素として前記酵素液を使用した。具体的操作としては、まず、下記実施例1~3で調製した3種の米糠由来又は玄米由来加水分解物を超純水で50mg/mlとなるように溶解し、同じく超純水にて、25、12.5、6.25、3.125mg/mlになるように2倍希釈溶液を調製した。96穴透明マイクロプレートに、あらかじめ37°Cに加温した2mMのAla-Pro-pNAを含む0.1Mトリス-塩酸バッファーpH7.580μlおよび米糠由来又は玄米由来加水分解物溶液10μlあるいは超純水を10μl/ウェル添加し撹拌した後、SH-8000マイクロプレートリーダーコロナ社製にて、37°C、5分間加温した。この後、DPP-IV酵素液を10μl/ウェル添加し攪拌した後、前記マイクロプレートリーダーにて1分間当たりの405nm吸光度変化を求めた。超純水を加えたものの吸光度変化を100とし、米糠由来又は玄米由来加水分解物溶液を添加した際の相対的な活性を算出した。各サンプルについてDPP-IV阻害率を3回測定して平均値を求めた。脱脂米糠の製造精米工場からの生糠を70~100°Cに加熱することにより、生糠に残留するリパーゼを失活させ、油が絞りやすい状態にしてレイノルズ社ドイツ製の搾油機AP14/22を用いて搾油した。圧搾された油と半脱脂米糠を分離し、半脱脂米糠には3~5倍量のエタノールを入れ、30~60°Cで0.5~4時間撹拌し、その後5Aの濾紙にてろ過した。この撹拌とろ過を再度繰り返し、半脱脂米糠を70°C以下の通風乾燥機で半脱脂米糠の水分が5以下になるように乾燥し、脱脂米糠を得た。米糠タンパクの調製250mlの水に1.0gのNaOHを溶解し、pHを12.5付近に調整したアルカリ溶液に上記のようにして得た脱脂米糠25gを加え、45°Cの温度で攪拌しながら2時間抽出した。遠心分離機により、ろ液とろ過物に分け、ろ過物にさらに上記アルカリ溶液を250ml加え、同様に抽出した。得られたろ液を併せて1~2規定の希塩酸でpH4に調整することにより、タンパク質を溶液中に沈殿させた。これを再度、遠心分離機でろ液とろ過物に分けた後、ろ過物を40°Cで減圧乾燥して米糠タンパクとして回収した。得られた米糠タンパクのタンパク含量はデュマ法で77.3であった。実施例1:デナチームAPによる米糠由来加水分解物の調製上記で得た米糠タンパク2.5gをプラスチック製50mlコニカルチューブにとり、蒸留水40mlに懸だくし、5規定NaOHによりpHを7.0に調整した。デナチームAPナガセケムテックス社製を25mg加え、反応温度を40°Cに設定した。反応装置は、エッペンドルフ社製サーモミキサーコンフォートを用い、750rpmの攪拌を行って終夜反応を行った。終夜反応の後、静置した状態で80°C、30分加熱して酵素を失活させた。反応終了時においても、不溶物が残存していたので、反応液を2000Gで20分間遠心分離し、その上清を液体チッソにより凍結し、ラブコンコ社製凍結乾燥用フラスコおよび装置を用いて、終日凍結乾燥を行い、デナチームAPによる米糠由来加水分解物1.1gを得た。ピーク分子量は230であった。DPP-IV阻害効果の評価上記説明したDPP-IV阻害率の測定方法にしたがって、実施例1のサンプルについてDPP-IV阻害率を3回測定して平均値を求めた。上記阻害活性とサンプル濃度固形分濃度の対数の関係式から逆算して、サンプルの50阻害濃度IC50を求めた。その結果、デナチームAPによる米糠由来加水分解物実施例1のIC50は、9.08±2.04mg/mlであった。実施例2:ウマミザイムGによる米糠由来加水分解物の調製上記で得た米糠タンパク2.5gを、プラスチック製50mlコニカルチューブにとり、蒸留水40mlに懸だくし、5規定NaOHによりpHを7.5に調整した。実施例1と同様の方法により、ウマミザイムGによる米糠由来加水分解物1.2gを得た。ピーク分子量は245であった。DPP-IV阻害効果の評価上記説明したDPP-IV阻害率の測定方法にしたがって、実施例2のサンプルについてDPP-IV阻害率を3回測定して平均値を求めた。上記阻害活性とサンプル濃度固形分濃度の対数の関係式から逆算して、サンプルの50阻害濃度IC50を求めた。その結果、ウマミザイムGによる米糠由来加水分解物実施例2のIC50は、2.34±0.13mg/mlであった。ウマミザイムGによる米糠由来加水分解物中のIle-ProおよびLeu-Proの定量上記ウマミザイムGによる米糠由来加水分解物を、200μg/mlになるように、0.1ギ酸を含む超純水に溶解した。また検量線を引く目的で、市販されているIle-Proバッケム社製を0.25、0.50、1.00μg/mlになるように、同じく0.1ギ酸を含む超純水に溶解した。これらサンプル各1μlをLC/MS分析した。装置は、高速液体クロマトグラフ装置NEXERAおよび質量分析計LCMS-2020いずれも島津製作所製を用い、カラムはジーエルサイエンス社製のInertsilODS-32.1mmID×50mmを40°Cで使用した。溶出は、0~1分、0.1ギ酸を含む超純水を供給し、1~11分、0から100へ、0.1ギ酸を含むアセトニトリルのグラジエント供給で、0.3ml/分の流速で行った。その結果、215nmおよびSelectedIonMonitoringSIMで、Ile-ProおよびLeu-Proに相当するM/Z=229.3を検出した。検量線から、ウマミザイムGによる米糠由来加水分解物中1mgあたり、2.91±0.52μgのIle-ProおよびLeu-Proが含まれていることが見積もられた。N末端解析の結果から、イソロイシンおよびロイシンの混合物が、4.2対5.8の割合で検出された。その結果、上記比率でIle-ProおよびLeu-Proが含まれているものとして、ウマミザイムGによる米糠由来加水分解物中1mgあたり、Ile-Proが1.22±0.22μg、Leu-Proが1.69±0.30μg含まれていると見積もられた。ゲル濾過カラムによる分画とDPP-IV阻害活性の測定阻害活性成分を同定するため、実施例2で得たウマミザイムGによる米糠由来加水分解物を分取用ゲル濾過カラムGEヘルスケア社製HiLoad2660Superdex30prepgradeで分画した。ウマミザイムGによる米糠由来加水分解物617mgを、150mMのNaClを含む0.1Mトリス-塩酸バッファーpH7.5で100mg/mlの濃度で溶解し、0.45μmのフィルターで濾過し、カラムに全量注入した。溶出液は、150mMのNaClを含む0.1Mトリス-塩酸バッファーpH7.5を用い、流速1ml/分で溶出させ、10mlずつ分画した。フラクションナンバー21から34について、DPP-IV阻害活性を測定した。具体的には、96穴透明マイクロプレートに、各フラクションあるいは150mMのNaClを含む0.1Mトリス-塩酸バッファーpH7.5を90μlおよびDPP-IV酵素液を5μl/ウェル添加し撹拌した後、SH-8000マイクロプレートリーダーコロナ社製にて、37°C、5分間加温した。この後、20mMのAla-Pro-pNAのDMSO溶液を5μl/ウェル添加し撹拌した後、前記マイクロプレートリーダーにて1分間当たりの405nm吸光度変化を求めた。150mMのNaClを含む0.1Mトリス-塩酸バッファーpH7.5を加えたものの吸光度変化を100とし、米糠由来加水分解物溶液を添加した際の相対的な活性を算出した。表2に各フラクションのDPP-IV阻害率を示す。図1は、分取用ゲル濾過カラムの結果であり、1は215nmにおける吸光度変化を、2はDPP-IV阻害率を示す。各フラクションについてDPP-IV阻害率を3回測定して平均値を求めた。表2に示すように、フラクションナンバー24において、最も強い阻害活性を認めた。活性画分のLC/MSによる解析前記フラクションナンバー24~27について、各溶液9mlを、透析チューブ家田紡績株式会社のSPECTRUMフロータライザーG2、容量10ml、分画分子量100~500に入れ、脱塩のため蒸留水4L×2回で透析した後、得られた透析液をプラスチック製50mlコニカルチューブにとり、ボルテックスエバポレーターラブコンコ社製にて乾固させ、フラクションナンバー24~27について、各々42、47、50、19mgの乾固物を得た。これを、0.1ギ酸を含む超純水に100μg/mlの濃度になるよう溶解し、各10μlをLC/MS分析した。装置は、高速液体クロマトグラフ装置NEXERAおよび質量分析計LCMS-2020いずれも島津製作所製を用い、カラムはジーエルサイエンス社製のInertsilODS-32.1mmID×50mmを40°Cで使用した。溶出は、0~1分、0.1ギ酸を含む超純水を供給し、1~11分、0から100へ、0.1ギ酸を含むアセトニトリルのグラジエント供給で、0.3ml/分の流速で行い、215nmおよびSelectedIonMonitoringSIMで検出した。SIM分析における検出するM/Zの値は、市販されている15種のXaa-Proジペプチドに相当する値、すなわち、173.2Gly-Pro、187.2Ala-Pro、203.2Ser-Pro、213.3Pro-Pro、215.3Val-Pro、217.3Thr-Pro、229.3Ile-Pro、Leu-Pro、Pro-Ile、Pro-Leuは、同じM/Z=229.3を与える、244.3Lys-Pro、247.3Met-Pro、253.3His-Pro、263.3Phe-Pro、272.3Arg-Pro、279.3Tyr-Pro、302.4Trp-Pro、計14種のM/Zを測定した。その結果、フラクションナンバー24に保持時間3.4分付近に、M/Z=229.3の顕著なピークが検出された。図2にフラクションナンバー24のSIMM/Z=229.3のマスクロマトグラムを示す。この条件でIle-Pro、Leu-Proの標品を分析したところ、全く同じ保持時間を与えた。また、この条件で、Pro-Ile、Pro-Leuの標品を分析したところ、各々の保持時間は、2.2分、2.9分付近であった。分取用逆相カラムによる分画とDPP-IV阻害活性の測定前記フラクションナンバー24について、阻害活性成分を同定するため、上記活性画分のLC/MSによる解析における方法と同様にして42mgの乾固物を得た。この乾燥物を、10mg/mlになるように、0.1ギ酸を含む蒸留水に溶解し、このうち50μLを高速液体クロマトグラフ装置日本ウォーターズ社製に注入し、分取用逆相カラムで分画した。カラムはジーエルサイエンス社製のInertsilODS-310mmID×150mmを40°Cで使用した。溶出は、0~3分、0.1ギ酸を含む超純水を供給し、3~13分、0から100へ、0.1ギ酸を含むアセトニトリルのグラジエント供給で、3ml/分の流速で行い、1.5mlずつ分画した。各フラクションについて、各10μlをLC/MS分析した。装置は、高速液体クロマトグラフ装置NEXERAおよび質量分析計LCMS-2020いずれも島津製作所製を用い、カラムはInertsilODS-32.1mmID×50mm、ジーエルサイエンス社製を40°Cで使用した。溶出は、0~1分、0.1ギ酸を含む超純水を供給し、1~11分、0から100へ、0.1ギ酸を含むアセトニトリルのグラジエント供給を、流速0.3ml/分の流速で行い、215nmおよびSelectedIonMonitoringSIMで検出した。M/Z=229.3で検出したところ、フラクションナンバー18に保持時間3.4分付近、M/Z=229.3の顕著なピークが検出された。フラクションナンバー18について、エドマン反応を利用した気相法プロテインシークエンサー島津製作所製にかけ、N末端に位置するアミノ酸を検出したところ、N末端には、イソロイシンおよびロイシンの混合物が、4.2対5.8の割合で検出され、N末端の次位置にはプロリンが検出された。よってこのフラクションナンバー18には、Ile-ProおよびLeu-Proが含まれていることが判明した。実施例3:ウマミザイムGによる玄米由来加水分解物の調製玄米タンパクNutribiotic社製2.5gを、プラスチック製50mlコニカルチューブにとり、蒸留水40mlに懸だくし、5規定NaOHによりpHを7.5に調整した。ウマミザイムGアマノエンザイム社製を25mg加え、反応温度を45°Cに設定した。実施例1と同様の方法により、ウマミザイムGによる玄米由来加水分解物1.45gを得た。ピーク分子量は225であった。DPP-IV阻害効果の評価上記説明したDPP-IV阻害率の測定方法にしたがって、実施例3のサンプルについてDPP-IV阻害率を3回測定して平均値を求めた。上記阻害活性とサンプル濃度固形分濃度の対数の関係式から逆算して、サンプルの50阻害濃度IC50を求めた。その結果、ウマミザイムGによる玄米由来加水分解物実施例3のIC50は、4.58±0.79mg/mlであった。試験例1:市販ジペプチドによるDPP-IV阻害活性の測定基質として、前記と同じAla-Pro-pNAを使用し、酵素としては前記酵素液を使用した。具体的操作としては、下記表3に示す16種のジペプチドを超純水にて、6.25、12.5、25、50、100mMになるように2倍希釈溶液を調製した。96穴透明マイクロプレートに、あらかじめ37°Cに加温した2mMのAla-Pro-pNAを含む0.1Mトリス―塩酸バッファーpH7.580μlおよびペプチド溶液10μlあるいは超純水10μl/ウェル添加し撹拌した後、SH-8000マイクロプレートリーダーコロナ社製にて、37°C、5分間加温した。この後、DPP-IV酵素液を10μl/ウェル添加し攪拌した後、前記マイクロプレートリーダーにて1分間当たりの405nm吸光度変化を求めた。超純水を加えたものの吸光度変化を100とし、ペプチド溶液を添加した際の相対的な活性を算出した。各サンプルについてDPP-IV阻害率を3回測定して平均値を求めた。表3に結果を示す。表3に示された結果から分かるように、Ile-Proが最も阻害活性が強く、そのIle-ProのレトロペプチドであるPro-IleおよびGly-Proは全く阻害を示さなかった。試験例2:ビオプラーゼSPによる米糠由来加水分解物の調製上記得られた米糠タンパク2.5gをプラスチック製50mlコニカルチューブにとり、蒸留水40mlに懸だくし、5規定NaOHによりpHを8.0に調整した。ビオプラーゼSPナガセケムテックス社製を25mg加え、反応温度を50°Cに設定した。反応装置は、エッペンドルフ社製サーモミキサーコンフォートを用い、750rpmの攪拌を行って終夜反応を行った。終夜反応の後、静置した状態で80°C、30分加熱して酵素を失活させた。反応終了時においても、不溶物が残存していたので、反応液を2000Gで20分間遠心分離し、その上清を液体チッソにより凍結し、ラブコンコ社製凍結乾燥用フラスコおよび装置を用いて、終日凍結乾燥を行い、ビオプラーゼSPによる米糠由来加水分解物0.65gを得た。ピーク分子量は11,500であった。基質として、前記と同じAla-Pro-pNAを使用し、酵素としては前記酵素液を使用した。具体的操作としては、まず、上記ビオプラーゼSPによる米糠由来加水分解物を超純水で80mg/mlとなるように溶解し、同じく超純水にて、40、20、10、5mg/mlになるように2倍希釈溶液を調製した。96穴透明マイクロプレートに、あらかじめ37°Cに加温した2mMのAla-Pro-pNAを含む0.1Mトリス-塩酸バッファーpH7.580μlおよび米糠由来加水分解物溶液10μlあるいはミリQ水を10μl/ウェル添加し撹拌した後、SH-8000マイクロプレートリーダーコロナ社製にて、37°C、5分間加温した。この後、DPP-IV酵素液を10μl/ウェル添加し撹拌した後、前記マイクロプレートリーダーにて1分間当たりの405nm吸光度変化を求めた。超純水を加えたものの吸光度変化を100とし、米糠由来加水分解物溶液を添加した際の相対的な活性を算出した。サンプルについてDPP-IV阻害率を3回測定して平均値を求めた。上記阻害活性とサンプル濃度固形分濃度の対数の関係式から逆算して、サンプルの50阻害濃度IC50を求めた。その結果、ビオプラーゼSPによる米糠由来加水分解物のIC50は、26.4±2.3mg/mlであった。ビオプラーゼSPによる米糠由来加水分解物を、200μg/mlになるように、0.1ギ酸を含む超純水に溶解した。また検量線を引く目的で、市販されているIleProバッケム社製を0.125、0.25、0.50、1.00μg/mlになるように、同じく0.1ギ酸を含む超純水に溶解した。これらサンプル各1μlをLC/MS分析した。装置は、高速液体クロマトグラフ装置NEXERAおよび質量分析計LCMS-2020いずれも島津製作所製を用い、カラムはジーエルサイエンス社製のInertsilODS-32.1mmID×50mmを40°Cで使用した。溶出は、0~1分、0.1ギ酸を含む超純水を供給し、1~11分、0から100へ、0.1ギ酸を含むアセトニトリルのグラジエント供給で、0.3ml/分の流速で行った。215nmおよびSelectedIonMonitoringSIMで測定したところ、IleProおよびLeu-Proに相当するM/Z=229.3の値は検出限界以下であり測定できなかった。"