ビール様飲料の製造方法であって、イソα酸の分解成分T-フラクションの添加工程を含んでなり、かつ製造飲料においてペクチネイタス属菌および/またはラクトバチルス属菌の増殖が抑制された、製造方法。製造された飲料中のT-フラクションの量が、飲料を下記分析条件:<高速液体クロマトグラフィ分析用試料調製条件>T-フラクションを添加した試料10mlに、1mlの3N塩酸を加えた後、20mlのイソオクタンを加え、振とう、静置し、この溶液は水溶層と、有機溶媒層との二層に分離し、有機溶媒層から10mlを採取し、採取した溶液を、窒素ガス噴霧下で完全に乾燥させ固体化し、これに内部標準物質βフェニルカルコン12mgと、エタノール溶液440mlとの混合溶液を1ml加え、溶解したものを高速液体クロマトグラフィ分析用試料とする、<高速液体クロマトグラフィ分析条件>カラム:C18カラム粒径5μm×内径46mm×カラム長150mm移動相Aの組成:蒸留水:リン酸=1000:0.02EDTA0.02移動相Bの組成:アセトニトリルグラジエントプログラムは以下の通りである:分析開始時においては、移動相Aの割合を70、移動相Bの割合を30とし、リテンションタイムが15分までに移動相Aの割合が70から60、移動相Bの割合が30から40となるように、連続かつ直線的なグラジエントを行い、リテンションタイムが15~22分の間は移動相Aの割合を60、移動相Bの割合を40とし、リテンションタイムが25分までに、移動相Aの割合が60から48、移動相Bの割合が40から52となるように、連続かつ直線的なグラジエントを行い、リテンションタイムが25~45分の間は移動相Aの割合を48、移動相Bの割合を52とする、移動相流速:毎分1.8ml流速一定検出波長:270nm、により高速液体クロマトグラフィ分析に付した場合、βフェニルカルコンのピーク面積に対するT-フラクションのピーク面積の比T-フラクション内標比が0.13以上となるようにT-フラクションを添加する、請求項1に記載の方法。T-フラクションの添加工程が、熱処理した異性化ホップエキスを発酵前液の煮沸中に添加する工程を含む、請求項1または2に記載の方法。ペクチネイタス属菌および/またはラクトバチルス属菌の増殖を抑制する量のT-フラクションを含む、ビール様飲料。ビール様飲料にT-フラクションを添加することを特徴とする、ペクチネイタス属菌および/またはラクトバチルス属菌の増殖抑制方法。本発明は、抗菌成分が含まれるビール様飲料およびその製造方法を提供することを目的とする。本発明者らは、特定量のイソα酸の分解成分T-フラクションが製造飲料に存在するようにビール様飲料を製造すると、製造飲料においてペクチネイタス属菌および/またはラクトバチルス属菌の増殖が抑制されることを見出した。本発明はこの知見に基づくものである。すなわち、本発明によれば以下の発明が提供される。1ビール様飲料の製造方法であって、α酸の分解成分T-フラクションの添加工程を含んでなり、かつ製造飲料においてペクチネイタス属菌および/またはラクトバチルス属菌の増殖が抑制された、製造方法。2製造された飲料中のT-フラクションの量が、飲料を下記分析条件:<高速液体クロマトグラフィ分析用試料調製条件>T-フラクションを添加した試料10mlに、1mlの3N塩酸を加えた後、20mlのイソオクタンを加え、振とう、静置し、この溶液は水溶層と、有機溶媒層との二層に分離し、有機溶媒層から10mlを採取し、採取した溶液を、窒素ガス噴霧下で完全に乾燥させ固体化し、これに内部標準物質βフェニルカルコン12mgと、エタノール溶液440mlとの混合溶液を1ml加え、溶解したものを高速液体クロマトグラフィ分析用試料とする、<高速液体クロマトグラフィ分析条件>カラム:C18カラム粒径5μm×内径46mm×カラム長150mm移動相Aの組成:蒸留水:リン酸=1000:0.02EDTA0.02移動相Bの組成:アセトニトリルグラジエントプログラムは以下の通りである:分析開始時においては、移動相Aの割合を70、移動相Bの割合を30とし、リテンションタイムが15分までに移動相Aの割合が70から60、移動相Bの割合が30から40となるように、連続かつ直線的なグラジエントを行い、リテンションタイムが15~22分の間は移動相Aの割合を60、移動相Bの割合を40とし、リテンションタイムが25分までに、移動相Aの割合が60から48、移動相Bの割合が40から52となるように、連続かつ直線的なグラジエントを行い、リテンションタイムが25~45分の間は移動相Aの割合を48、移動相Bの割合を52とする、移動相流速:毎分1.8ml流速一定検出波長:270nm、により高速液体クロマトグラフィ分析に付した場合、βフェニルカルコンのピーク面積に対するT-フラクションのピーク面積の比T-フラクション内標比が0.13以上となるようにT-フラクションを添加する、1に記載の方法。3T-フラクションの添加工程が、熱処理した異性化ホップエキスを発酵前液の煮沸中に添加する工程を含む、1または2に記載の方法。4ペクチネイタス属菌および/またはラクトバチルス属菌の増殖を抑制する量のT-フラクションを含む、ビール様飲料。5ビール様飲料にT-フラクションを添加することを特徴とする、ペクチネイタス属菌および/またはラクトバチルス属菌の増殖抑制方法。本発明の製造方法は、抗菌成分が含まれるビール様飲料を提供できる点で有利である。以下の例に基づいて本発明を具体的に説明するが、本発明はこれらの例に限定されるものではない。植菌試験用T-フラクション抽出液の調製異性化ホップエキススタイナー社製米国を蒸留水に0.5溶解させた後に、溶解液を乳酸によりpH3.0に調整した。該溶解液を135°Cで、20分間オートクレーブ処理した処理液をT-フラクション抽出液とした。T-フラクション抽出液添加による植菌試験ペクチネイタスフリシンジェンシス市販品のビールに上記T-フラクション抽出液を添加し、ビール混濁菌であるペクチネイタスフリシンジェンシス入手先:ドイツ微生物寄託機関DeutscheSammlungvonMicroorganismenundZellkulturenGmbHDSMの増殖抑制効果を得る成分値の範囲を探索した。抽出液の各添加水準は、下記に示した表1の通りであった。さらに、1.0×104CFU/mlレベルでペクチネイタスフリシンジェンシスを植菌し、14日間30°Cで培養後、生菌数を確認した。試験の結果を表1に示す。T-フラクション抽出液添加による植菌試験ラクトバチルスブレビス市販品のビールに上記T-フラクション抽出液を添加し、ビール混濁菌であるラクトバチルスブレビス入手先:ドイツ微生物寄託機関DeutscheSammlungvonMicroorganismenundZellkulturenGmbHDSMの増殖抑制効果を確認した。抽出液の各添加水準は、下記に示した表2の通りであった。さらに、1.0×104CFU/mlレベルでラクトバチルスブレビスを植菌し、14日間30°Cで培養後、生菌数を確認した。試験の結果を表2に示す。高速液体クロマトグラフィ分析のための試料の調製T-フラクションを添加した各試料10mlに、1mlの3N塩酸を加えた後、20mlのイソオクタンを加え、振とう、静置した。この溶液は、水溶層と、有機溶媒層との二層に分離し、有機溶媒層から10mlを採取した。採取した溶液を、窒素ガス噴霧下で完全に乾燥させ固体化させた。これに内部標準物質βフェニルカルコン12mgと、エタノール440mlとの混合溶液を1ml加え、溶解したものを高速液体クロマトグラフィ分析用試料とした。高速液体クロマトグラフィ分析によるT-フラクション内標比の算出高速液体クロマトグラフィの分析条件は、以下の通りである。<高速液体クロマトグラフィ分析条件>カラム:Alltima88052オルテック社製粒径5μm×内径46mm×カラム長150mmサンプル注入量10μl移動相Aの組成:蒸留水:リン酸=1000:0.02EDTA0.02移動相Bの組成:アセトニトリルグラジエントプログラムは以下の通りである表3参照:分析開始時においては、移動相Aの割合を70、移動相Bの割合を30とし、リテンションタイムが15分までに移動相Aの割合が70から60、移動相Bの割合が30から40となるように、連続かつ直線的なグラジエントを行い、リテンションタイムが15~22分の間は移動相Aの割合を60、移動相Bの割合を40とし、リテンションタイムが25分までに、移動相Aの割合が60から48、移動相Bの割合が40から52となるように、連続かつ直線的なグラジエントを行い、リテンションタイムが25~45分の間は移動相Aの割合を48、移動相Bの割合を52とした。移動相流速:毎分1.8ml流速一定検出波長:270nm高速液体クロマトグラフィ用カラムAlltima88052オルテック社製粒径5μm×内径46mm×カラム長150mmを用いて、蒸留水:リン酸=1000:0.02EDTA0.02で作成した移動相A、アセトニトリルトリルの移動相Bを、上記表3のグラジエントプログラムのとおり、高速液体クロマトグラフィ分析を行った場合において、リテンションタイムが6~12分あるいはイソα酸のピークよりも早く検出されるピークの中で検出強度縦軸が他のピークよりも高い2本のピークで、各々のリテンションタイムが内部標準物質βフェニルカルコンより33分±0.6分、30分±0.7分早く検出されるピーク面積を総和し、T-フラクションと表記し、内部標準物質βフェニルカルコンのピーク面積の総和を内部標準物質βフェニルカルコンと表記した図1参照。T-フラクション内標比は、上記式Iに基づき算出した。試験醸造品でのT-フラクション増量の検証200Lスケールの試醸設備にて、まずは通常のビール製法にしたがって、糖化工程を行った。麦汁濾過工程を経て、麦汁煮沸開始時、T-フラクション抽出液を通常のホップと同時に煮沸釜へ添加し、70分間煮沸した。添加したTフラクション溶液は、異性化ホップエキススタイナー社製米国を蒸留水に0.5溶解させた後に、pHを乳酸により3.0に調整し、該溶解液を135°Cで、20分間オートクレーブ処理して調製し、その処理液をT-フラクション抽出液として上記の添加に用いた。麦汁煮沸終了後、仕込麦汁糖度12度に調整した仕込麦汁仕込時の麦芽使用比率49、副原料液糖、大麦使用比率51を調製した。この仕込麦汁を冷却し、冷麦汁サンプルを得た。その後、冷麦汁に酵母を添加し、主発酵7日、後発酵15日を経て、濾過を行った発泡酒を、試験醸造品とした。その結果、煮沸中にT-フラクション抽出液を添加することで、上記試験醸造品において、ペクチネイタスフリシンジェンシスおよびラクトバチルスブレビスの増殖抑制可能な範囲までT-フラクションを増量できることが明らかとなった表4参照。なお、表4中、試験区AはT-フラクション抽出液を添加したもの、試験区BはT-フラクション抽出液を添加していないものを表す。T-フラクションを増量させた試験醸造品の香味確認上記T-フラクションを増量させた試験醸造品について、官能評価を行なった。また、抗菌活性を有する既知のホップ成分であるα酸およびα酸の酸化成分を増量させた試験醸造品についても官能評価を行なった。α酸およびα酸の酸化成分を増量させた試験醸造品の作成方法は、それぞれ下記に記載した方法に準じた。α酸は、ペレットホップHPEType90を、80エタノールに24時間、4°Cで浸漬させ、抽出した。浸漬後、6000rpm、15分間遠心分離し、その上清をα酸抽出液とした。このα酸抽出液を市販品ビールに加え、上記と同様に植菌試験を行った。結果は下記表6に表す。また、下記に示す高速液体クロマトグラフィ分析条件により、α酸の内標比内部標準物質:βフェニルカルコンを求めた。<α酸の高速液体クロマトグラフィ分析のための試料の調製>α酸抽出液を添加した各試料10mlに、1mlの3N塩酸を加えた後、20mlのイソオクタンを加え、振とう、静置した。この溶液は、試料から成る水溶層とイソクタンから成る有機溶媒層の2層に分離し、イソオクタン有機溶媒層から10mlを採取した。採取した後、窒素がガス噴霧下で完全に乾燥させ固体化させた。これに内部標準物質βフェニルカルコン12mgを加えたリン酸メタノール溶液リン酸:メタノール=40ml:400mlを1ml加え、溶解したものを高速液体クロマトグラフィ分析用試料とした。<高速液体クロマトグラフィ分析によるα酸内標比の算出>高速液体クロマトグラフィの分析条件は、以下の通りである。カラム:Nucleosil100-5C184.0×250mmサンプル注入量:50μl移動相Cの組成:蒸留水27.0メタノール72.0リン酸1.0移動相Dの組成:メタノール99.0リン酸1.0移動相流速:1ml/min.流速一定検出波長:270nm高速液体クロマトグラフィ用カラム;Nucleosil100-5C1840×250mmを用いて、蒸留水27、メタノール72、および、リン酸1からなる移動相Cを、1ml/分の一定流速で270nmの検出波長の高速液体クロマトグラフィによる測定をした場合において、α酸ピークのリテンションタイムRTは6.5~10.0分であり、その間の面積の総和を求め、その面積と内部標準物質βフェニルカルコンのピーク面積との比により求めた。α酸ピークのRTは±0.5分の差は許容される。α酸の酸化成分は、大気存在下で25°C2週間後熟させたペレットホップCSAを、水に24時間、4°Cで浸漬させ、抽出した。浸漬後、6000rpm、15分間遠心分離し、その上清をα酸の酸化成分抽出液とした。このα酸酸化成分抽出液を市販品ビールに加え、上記と同様に植菌試験を行った。結果は下記表6に表す。また、上記α酸と同様の高速液体クロマトグラフィ分析条件により、α酸の酸化成分の内標比内部標準物質:βフェニルカルコンを求めた。α酸酸化成分はイソα酸ピーク以前に検出される全てのピークの面積を総和し、その面積と内部標準物質βフェニルカルコンのピーク面積との比により求めた。下記官能評価の結果、α酸およびα酸の酸化成分は、ペクチネイタスフリシンジェンシスの増殖抑制効果が表れるまで増量すると、渋みを若干感じるが、T-フラクションは、ペクチネイタスフリシンジェンシスの増殖抑制効果が表れるまで増量しても、異臭味はなく、香味に対して影響しなかった表6参照。市販品の分析結果市販品のT-フラクションの内標比を上記の高速液体クロマトグラフィ条件と同様の条件で測定し、T-フラクションの内標比を算出した。その結果を下記表7に示した。測定した市販品の中には、T-フラクションの内標比が0.13以上のものは存在しなかった。