固体フィブリン網の製造方法であって:血液を患者から吸引すること;血液から血漿を分離すること;および血漿を同時的に凝固および遠心分離して固体フィブリン網を形成することを含み、前記固体フィブリン網が生きた生物内で身体組織を再生するために適する、前記方法。血液から分離した血漿が内因性カルシウムを含有する、請求項1の方法であって、さらに:血漿と抗凝固剤とを接触させること;および血漿と、内因性カルシウムに対するのと比べて抗凝固剤に対して同等または高い親和性を有するカチオン種を含む凝固剤とを接触せることを含む、前記方法。カチオン種が、マグネシウム、マンガン、亜鉛およびそれら組み合わせのうち少なくとも1つを含む、請求項2の方法。カチオン種がカルシウムを含む、請求項2の方法。カチオン種が、塩化カルシウム、フッ化カルシウム、炭酸カルシウム、グルコン酸カルシウム、フマル酸カルシウム、ピルビン酸カルシウムおよびそれらの組み合わせのうち少なくとも1つを含む、請求項2の方法。固体フィブリン網が治癒増進剤をさらに含む、請求項1の方法。治癒増進剤が、抗生物質、鎮痛剤、癌治癒剤、血小板成長因子、骨形成タンパク質、幹細胞、骨移植片材料、軟組織移植片、細胞培養材料、免疫抑制剤、インプラントおよびそれらの組み合わせのうち少なくとも1つを含む、請求項6の方法。治癒増進剤が抗生物質を含み、該抗生物質がアンピシリン、エリスロマイシン、トブラマイシンおよびそれらの組み合わせのうち少なくとも1つを含む、請求項7の方法。治癒増進剤が鎮痛剤を含み、該鎮痛剤がアスピリン、コデインおよびそれらの組み合わせのうち少なくとも1つを含む、請求項7の方法。治癒増進剤が骨移植片材料を含み、該骨移植片材料が自己由来骨、死体からの同種異系移植片、死体からの同種移植片、動物由来骨、合成骨移植片、正生物性化合物、骨形成因子BMP、組み換えヒト骨形成因子rhBMPおよびそれらの組み合わせのうち少なくとも1つを含む、請求項7の方法。治癒増進剤が、皮膚、皮膚移植片材料、歯肉移植片、コラーゲン、生物吸収性移植片、脈管移植片、血小板由来成長因子、血小板因子4PF4、トロンボグロブリン、トロンボスポンジンおよびそれらの組み合わせのうち少なくとも1つを含む、請求項7の方法。治癒増進剤が、器官移植用の免疫抑制剤および皮膚免疫抑制剤のうち少なくとも1つを含む、請求項7の方法。固体フィブリン膜が、所望の分子発現、遺伝子治療および細胞治療のための生きた細胞を含む、請求項1の方法。患者にて固体フィブリン網を使用することをさらに含む、請求項1の方法。遠心分離が軸方向型である、請求項1の方法。軸方向遠心分離に使用する装置であって、該装置が:一次チャンバ;凝固剤を含有する二次チャンバ;および一次チャンバを二次チャンバから分離する媒体を含む、軸方向遠心分離に使用する装置。一次チャンバが抗凝固剤を含有する、請求項16の装置。凝固剤が、マグネシウム、マンガン、亜鉛およびそれらの組み合わせのうち少なくとも1つを含む、請求項16の装置。凝固剤がカルシウムを含む、請求項16の装置。凝固剤が、塩化カルシウム、フッ化カルシウム、炭酸カルシウム、グルコン酸カルシウム、フマル酸カルシウム、ピルビン酸カルシウム、有機カルシウム塩およびそれらの組み合わせのうち少なくとも1つを含む、請求項19の装置。媒体がフィルターを含み、該フィルターが、一次チャンバ内に吸引された血液に由来する赤血球および白血球細胞が約1000xGまたはそれ以上の遠心分離力の下で二次チャンバに入るのを実質的に阻止するが、該血液に由来する血漿および血小板が約1000xGまたはそれ以上の遠心分離力の下で二次チャンバに流れるのを実質的に許容する、請求項16の装置。媒体が分離媒体を含む、請求項16の装置。分離媒体が、遠心分離前の一次チャンバと二次チャンバとの間の流体的連通を実質的に阻止し、且つ、約1000xGまたはそれ以上での遠心分離の間は一次チャンバと二次チャンバとの間に流体的連通を提供するよう動く、請求項22の装置。分離媒体が、一次チャンバ内に吸引された血液に由来する赤血球および白血球細胞が二次チャンバに入ることを遠心分離の後実質的に阻止する、請求項23の装置。分離媒体が、シリコーンゲル、ポリエステルゲル、チキソトロピックゲルおよびそれらの組み合わせのうち少なくとも1つを含む、請求項22の装置。一次チャンバが、遠心分離の間、二次チャンバの上方にある、請求項16の装置。一次チャンバが第一の外周を有し、二次チャンバが第二の外周を有し、該第一の外周および第二の外周が、実質的に同一である、請求項16の装置。一次チャンバが第一の外周を有し、二次チャンバが第二の外周を有し、該第一の外周が第二の外周よりも小さい、請求項16の装置。一次チャンバおよび二次チャンバのうち少なくとも一方が治癒増進剤を含有する、請求項16の装置。治癒増進剤が、抗生物質、鎮痛剤、癌治癒剤、血小板成長因子、骨形成タンパク質、幹細胞、骨移植片材料、軟組織移植片、血小板由来成長因子細胞培養材料、免疫抑制剤およびそれらの組み合わせのうち少なくとも1つを含む、請求項29の装置。軸方向遠心分離に使用する装置であって、該装置が:第一の外周を有する第一のチャンバ;および第二の外周を有し、凝固剤を含有する第二のチャンバを含み、該第二の外周が第一の外周よりも大きい、軸方向遠心分離に使用する装置。凝固剤が、マグネシウム、マンガン、亜鉛およびそれらの組み合わせのうち少なくとも1つを含む、請求項31の装置。凝固剤がカルシウムを含む、請求項31の装置。活性剤が、塩化カルシウム、フッ化カルシウム、炭酸カルシウム、グルコン酸カルシウム、フマル酸カルシウム、ピルビン酸カルシウム、有機カルシウム塩およびそれらの組み合わせのうち少なくとも1つを含む、請求項33の装置。第一のチャンバが、上側部分と下側部分とを含む、請求項31の装置。上側部分と下側部分が、それらの間の流体的連通を実質的に阻止する媒体により分離する、請求項35の装置。約1000xGまたはそれ以上で遠心分離するとき、上側部分と下側部分との間の流体的連通が提供される、請求項36の装置。第一のチャンバの下側部分が、第二のチャンバと流体的に連通している、請求項37の装置。治癒剤をさらに含む、請求項31の装置。第一のチャンバが抗凝固剤を含有する、請求項31の装置。真空状態で密封可能で、透明な白色ガラスで出来ており、不活性で且つ厚さ1mmの抗生物質用の5mlガラス容器内に、フィブリン安定化剤として機能するトラネキサム酸100mgを導入した。純度98以上である合成トラネキサム酸は、アメリカの会社であるシグマSigmaインコーポレーテッドにより市販されている。これと別個に、同一のアメリカの会社シグマインコーポレーテッドからのCaCl22H2O純度>99を精密はかりにて147.0g計量することにより、1MのCaCl2溶液を作製した。この塩を、頻繁に攪拌下、数分間、室温にて、正確に1リットルの超高純度非発熱性蒸留水中に溶解させた。±5の供給精度エッペンドルフのようなを有する精密ピストンディスペンサを使用して、80μLの活性剤溶液をガラス容器中に導入した。このステップにおいて、供給と同時に、あらゆる粉体又はフィラメントによる汚染の可能性を慎重に防止しつつ、0.22μmのミリポア滅菌処理用フィルタを使用してろ過を行った。最後に、その後の真空栓止め、及び気体を使用することによる更なる滅菌処理の可能性を許容し得るように、容器を完全に栓をしないよう注意しつつ、穿刺可能且つ真空圧下にて栓止め可能なゴムストッパにてガラス容器に栓をした。次に、雰囲気中の固体粒子による汚染の可能性を防止しつつ滅菌チャンバ内のULPA又はHEPAろ過、真空栓止めするための適切な装置内に容器を導入した。膜真空ポンプ及び測微制御装置を使用することにより、4mlの真空圧を装置の内部雰囲気に加えた。内部雰囲気中の真空レベルを制御するため、精密真空計測器を使用した精度1mバール。最後に、装置を排出せずに、その後に以下の実施例で説明するように使用すべく回収し得るよう、容器を真空圧下にて栓止めした。例えば、0.106Mクエン酸ナトリウム溶液を添加したベクトン-ディキンソンBecton-DickinsonのバキュテイナVACUTAINER登録商標名滅菌試験管を使用して、臨床分析のための定量標準に従って、患者から10mlの静脈血液を吸引した。この目的のために、二ナトリウム又は二カリウムエチレンジアミンテトラアセテートを添加した試験管を使用することもできる。血液を吸引する間、試料を慎重に滅菌状態に保った。最後に、成分を完全に混合し、これによりクエン酸ナトリウムの抗凝固作用を保証すべく、試料を静かに振った。次に、遠心分離装置の損傷を防止するためロータの重量を慎重に釣り合わせつつ、試験管を適切な遠心分離装置内に導入した。蓋が密封されたならば、試料を15分間、3500rpmにて遠心分離し、これにより赤血球細胞高濃度をクエン酸添加血漿上澄み液から分離した。この場合、主としてドナーの血液の特徴に依存する血漿の収率は、55の高さであった。分離した血漿を含有する試験管を滅菌状態下で栓止めした状態に保ち、血漿自体を回収すべくスタンド内に垂直に配置したが、遠心分離中に分離した2相の混合を防止するため、このステップ中試験管を振らないように注意した。次に、変性アルコールを使用して試験管キャップの外側部分を滅菌処理し、次に、滅菌注射器に接続した滅菌針を試験管キャップに導入した。針を2相の分離メニスカスから3~4mmだけ離し、4mlの血漿を吸引した。実施例1にて説明したように調整した、本発明による容器のキャップを事前にアルコールを使用して滅菌し、同一の針を使用することにより穿刺した。針がキャップを穿刺すると直ちに、注射器内に保持されたクエン酸塩添加血漿を、完全に容器内に吸引した。容器を静かに振り、37°Cにて約2分後、直ちに使用できる滅菌性の自己由来フィブリングルーの凝血塊を得た。5mlのクエン酸ナトリウムバキュテイナ登録商標名試験管ベクトン-ディキンソンを使用して49歳の患者から約18mlの静脈血液を吸引し、試料を吸引した直後に、静かに振るよう注意した。このように採取した血液を、血漿を分離すべく直ちに遠心分離した2500rpmにて15分間。実施例1にて説明したように調整したただしトラネキサム酸は使用せず各々120μLのCaCl210g/100mlを含有する2つの10ml試験管に、血漿12mlを慎重に移した。血漿を活性剤と混合した後、試験管を3000rpmにて30分間遠心分離し、最終的に、2つの大きいフィブリン試料が得られ、これらフィブリン試料を、滅菌性に対するあらゆる注意を払って、製造後2~3時間以内に、大きい小嚢状の下顎骨キャビティ内に挿入した。該キャビティは、埋伏した左犬歯及び右側の第二の門歯の抜歯により、及び門歯の歯の中央領域に存在するシストを切除することにより形成されたものである。最後に、歯肉端縁を8回縫って閉じた。15日後の放射線写真チェックは、フィブリンが外見上無傷のままでその所要位置に留まっていることを示した。7ヶ月後の組織構造は、フィブリンが骨組織にて完全に置換されたことを明らかにし、同一の結果を実現するのに12ヶ月以上必要とする従来の方法よりも優れた術後経過であった。自己由来のフィブリンの製造のため何ら抗フィブリン溶解剤が使用されないから、この場合、特定の目的のため上記添加剤が有用であると説明することができる。接着フィブリングルーを生産するため、実施例3のように得られた12mlの血漿を、滅菌性を保つための全ての措置を採って、実施例1にて説明したように調整した、本発明による20mlの容器に移した。慎重に攪拌した後、混合した血漿を化学実験室にて使用される型式の滅菌性ガラススライドに注ぎ、ここで、血漿を、滅菌性且つ非常に純粋な珊瑚由来の炭酸カルシウムフランス、ノーテブスNOTEBSS.A.のバイオコーラルBIOCORAL登録商標名又はフッ化カルシウム>98、シグマインコーポレーテッドと混合した。これらのカルシウム塩は、共に、線維芽細胞の刺激剤として当該技術分野の当業者に周知である。血漿の一部分を炭酸カルシウムの一部分と例えば、2ml対500mgで混合させることにより、柔軟で滅菌性の接着ペーストが得られ、感染した粘液質の嚢を切除した後の歯肉下空間又は異なるキャビティに対するフィラーとして使用した。ペーストは、空の空間を充填するように配置され、止血栓として機能する固体フィブリン網を数分にて形成し、また、粘液質の端縁を所要位置に支持し、後に結合性細胞の移行が開始する箇所に、自己由来の生物学的基層を形成した。フィブリングルーの膜を得るため、実施例3のように得られた20mlの血漿を、実施例1のように調整した本発明による25mlの平坦底部の容器に入れた。通常の慎重な攪拌の後、容器を旋回ロータにて40分間、4000rpmにて遠心分離した。遠心分離工程の終了時、試験管の底部から、白色の極めて濃密で且つ引張り強度の大きい膜が回収され、その寸法は試験管の底部と等しく直径24mm、厚さは3mmであった。この自己由来の膜は、その濃密さ及び強度のため、多孔質合成膜の置換品として、歯科及び一般的な外科手術における保持膜及び分離膜として使用した。得られた膜は、数日間、4°Cにて滅菌状態にて保存することができる。大きい寸法のフィブリングルーの膜を得るため、約200mlのクエン酸添加血漿を患者から吸引し、二重輸血バッグ内に集め分離した。血漿に対し12時間、-80°Cにて凍結することにより寒冷沈降反応を行い、解凍は4°Cにて一昼夜行ったこの方法は、当該技術分野の当業者に周知である。同日の朝、この方法により得られた血漿に対し15分間、4°Cにて5000rpmの遠心分離を行い、約20mlの寒冷沈降物を得た。加圧装置例えば、フランスの会社、ジョアンJouanS.A.のXP100を使用することにより上澄み液を慎重に除去した後、寒冷沈降物を同一患者の20mlの全血漿と共に取り出した。得られた40mlを、実施例1のように適切な量の活性剤を含有する本発明による直径35mmの平坦な底部の滅菌性ポリプロピレン容器に入れた。慎重に振った後、容器を40分、5000rpmにて遠心分離し、実施例5におけると同様ではあるが、フィブリンの含有量がより多量であるために、より濃密で引張り強度の大きい膜が得られた。上記膜もまた、4°Cにて数日間、滅菌形態にて保存することができる。実施例5にて説明した方法にて得られた膜は、実施例4にて記載した利用に加えて、極めて重篤な湯症の症例に移植すべき移植片を得るために、同一患者の表皮細胞のインビトロ培養のための基質として使用することができる。上述した目的に有用な良好な品質の膜はまた、本発明による容器内に直接移した全分離血漿からも得ることができる。得られた膜は、上述したものよりも薄いが、外科手術用及び細胞成長のための基質として依然として有用である。実施例5における寒冷析出物から開始して噴霧フィブリンを得るため、20mlの寒冷析出物を室温にて10mlの全血漿と共に取り出し、静かに振って完全に溶解させた。得られる血漿を、実施例1のように調整した本発明による50mlの容器内に慎重に移し、成分が完全に混合するように静かに振った。120秒後、室温にて、該試験管を当該技術分野の当業者に既知のベンチュリ型滅菌空気コンプレッサに接続して、外科手術が行われる出血器官肺、心臓、脾臓、動脈吻合の表面に均一に分配した。濃縮フィブリノーゲン、トロンビン、カルシウムイオン及び他の凝固酵素を含有する濃縮血漿を器官上に分配すると、患者の内皮内に存在する組織性凝固活性化酵素もあるため、数秒にて凝固し、保護止血作用を有するフィブリンフィルムを形成した。これにより、外科手術の内部出血が減少し、故に、更なる輸血又は合併症が回避された。実施例5にて説明した方法により得られた膜はまた、多血小板血漿PRPを開始血液成分として使用するならば、自己由来の血小板を組み入れることになろう。全血からPRPを得るため、血液試料を10~15分間、1000xgにて遠心分離し得る。続くステップは、上述した実施例にて説明したものと同様である。この適用方法により得られた膜は、ワン及びヴァッシロポウルスVassillopoulosが記載したネイチャー、422巻-2003、4月24日幹細胞の融合現象をインビトロで研究するための活性基質として使用することができる。この研究は、マウスの肝臓内で肝細胞の存在下にて成長する幹細胞の使用を開示し、損傷し又は欠陥のある組織を再生することのできる新たな種類の細胞を形成するためにそれらのゲノムを融合させている。上述したように得られた膜は、成長因子及び他の刺激剤の提供物である血小板が存在するため、この極めて重要な現象をインビトロにて研究するための支持体として使用することができ、また、最終的に得られた新たな細胞の世代を、インビボに導入すべく使用することができる軟骨細胞又は上皮細胞に対して行ったものと同様。以下の方法は全て、滅菌状態にて層流キャビネット下にて操作した。固体の生検試料から開始して表皮組織をホモジェナイザーにて処理し、その単一細胞の完全な状態を保持しつつ、小さな細胞凝集物を分離した。ホモジネートを、40mMの滅菌PBSリン酸塩緩衝溶液Ph7.3-ギブコGibcoにて洗浄後、細胞をPP管内で7~15分間、500~1000xgにて遠心分離し、ペレットを回収した。洗浄は2回繰り返した。次に、得られた細胞を0.05トリプシン/0.02EDTAの溶液にて20分間、37°Cにて消化し、細胞を支えるコラーゲン構造体を除去した。その後、細胞を滅菌PBSにて充分に洗浄し、コラゲナーゼを除去した。次に、細胞を培地例えば、M199、HAM-F12、又は当該技術分野の当業者に既知のその他のもの内に再懸濁させ、フィブリン膜の表面に均質に分配した。フィブリン足場の表面における細胞の密度は、上皮細胞の培養結果を良好なものとするために重要である。例えば、最良の結果は、1~3×104細胞/cm2の密度の膜にて得ることができ、この場合、細胞は、通常、分配後15~60分で接着し、2~5時間後、これら細胞は完全に平坦になる。培養物を、37°Cにて5CO2及び、R.H.98の制御された雰囲気内に保ち、培養物の発達を定期的に制御し、結果として、必要ならば、培地を2~3日毎に交換し、5日間保つことができる。円筒状容器の場合、CO2培養器内にて、適正なローラシステムを24時間ベースにて使用し、培地が膜表面を絶えず洗浄して培養中の細胞に栄養を供給するようにした。培養は、気体の交換を許容するが内部の滅菌性を保つ通気システムを有する、適正な滅菌性容器内で行う必要がある。フィブリン膜は、容器の内側に形成され、培養時間の全体を通してフラスコの内面に完全に接着する必要がある。インビトロで培養物の発達を確認した後例えば、位相差顕微鏡を使用して、上面に細胞を有する膜を慎重に除去し、この膜は、滅菌状態下で患者の傷口又は火傷に移植する用意ができており、最終的に、該膜を縫うことで所要位置に保たれる。