アルデヒド分解活性を有するグルコノバクター属に属する微生物又はその抽出物若しくは菌体破砕物を含有するアルデヒド除去組成物であって、前記グルコノバクター属に属する微生物はアルデヒド生成活性よりもアルデヒド分解活性が高いことを特徴とする、前記アルデヒド除去組成物。前記グルコノバクター属に属する微生物がアルデヒド濃度と比較してアルコール濃度が高い条件下でアルデヒドを分解できることを特徴とする、請求項1記載のアルデヒド除去組成物。前記グルコノバクター属に属する微生物がグルコノバクターコンドニイ又はグルコノバクターカンチャナブリエンシスに属する微生物である、請求項1記載のアルデヒド除去組成物。前記グルコノバクターコンドニイ又はグルコノバクターカンチャナブリエンシスに属する微生物がNBRC3266又はNBRC103587で特定される微生物である、請求項3記載のアルデヒド除去組成物。前記アルデヒドがアセトアルデヒドである、請求項1記載のアルデヒド除去組成物。前記アルコールがエタノールである、請求項2記載のアルデヒド除去組成物。上部消化管癌罹患リスク低減組成物である、請求項1記載のアルデヒド除去組成物。上部消化管癌が口腔癌、咽頭癌及び食道癌から成る群より選択される、請求項7記載のアルデヒド除去組成物。臭い除去組成物である、請求項1記載のアルデヒド除去組成物。臭いが熟柿臭である、請求項9記載のアルデヒド除去組成物。飲酒後の口腔内アセトアルデヒド除去に使用するための、請求項1記載のアルデヒド除去組成物。請求項1~11のいずれか1項記載のアルデヒド除去組成物を含有する飲食品。上述した実情に鑑み、本発明は、飲酒後の口腔内に蓄積するアセトアルデヒドを口腔内から安全な手段で除去する方法を提供することを目的とする。また、本発明は、フラッシャーにおける上部消化管癌の発癌リスク因子であり、飲酒後の口腔内に蓄積するアセトアルデヒドを分解して、その口腔内濃度を発癌濃度22ppm以下にまで速やかに低減させる方法を提供することを目的とする。その方法の一つとして、食品微生物や腸内細菌のようにヒトの体内に天然に存在している菌又は環境中に存在するヒトに無害な微生物を用いて、アセトアルデヒドを分解除去する方法が考えられる。ただし、当該方法が満たすべき課題は、i飲酒飲食後の口腔内に残存するアルコールからアセトアルデヒドの生成をもたらさないこと、又はアセトアルデヒドを防止することを目的とした特段の処理を必要としないこと、iiアセトアルデヒドの分解除去を促すための酸化型補酵素の添加を必要としないこと、及びiiiアセトアルデヒドを分解する過程で有害物質を生成しないこと、又はアセトアルデヒド分解の過程で生成する有害物質の分解を目的とした添加物を加える必要がないことである。特に飲酒後の口腔内ではアルコールの濃度がアセトアルデヒドの濃度の数百倍から数千倍に及び、そのような条件下でアセトアルデヒドを効率よく分解する必要がある。一般にアセトアルデヒド分解能をもつ微生物は強力なエタノール酸化活性をもつため、大過剰のエタノール存在下ではアセトアルデヒドを生成してしまう。このため、飲酒後の口腔内に蓄積するアセトアルデヒドを口腔内から除去しうる微生物製剤は知られていない。上記課題を解決するため鋭意研究を行った結果、発癌リスク因子であり、また熟柿臭等の臭いの原因であるアセトアルデヒド等のアルデヒドを大過剰のアルコール存在下で分解できる微生物を探索し、グルコノバクター属に属する微生物の中に本発明の目的に合致した微生物を見出し、本発明を完成するに至った。本発明は以下を包含する。1アルデヒド分解活性を有するグルコノバクター属に属する微生物又はその抽出物若しくは菌体破砕物を含有するアルデヒド除去組成物であって、前記グルコノバクター属に属する微生物はアルデヒド生成活性よりもアルデヒド分解活性が高いことを特徴とする、前記アルデヒド除去組成物。2前記グルコノバクター属に属する微生物がアルデヒド濃度と比較してアルコール濃度が高い条件下でアルデヒドを分解できることを特徴とする、1記載のアルデヒド除去組成物。3前記グルコノバクター属に属する微生物がグルコノバクターコンドニイ又はグルコノバクターカンチャナブリエンシスに属する微生物である、1記載のアルデヒド除去組成物。4前記グルコノバクターコンドニイ又はグルコノバクターカンチャナブリエンシスに属する微生物がNBRC3266又はNBRC103587で特定される微生物である、3記載のアルデヒド除去組成物。5前記アルデヒドがアセトアルデヒドである、1記載のアルデヒド除去組成物。6前記アルコールがエタノールである、2記載のアルデヒド除去組成物。7上部消化管癌罹患リスク低減組成物である、1記載のアルデヒド除去組成物。8上部消化管癌が口腔癌、咽頭癌及び食道癌から成る群より選択される、7記載のアルデヒド除去組成物。9臭い除去組成物である、1記載のアルデヒド除去組成物。10臭いが熟柿臭である、9記載のアルデヒド除去組成物。11飲酒後の口腔内アセトアルデヒド除去に使用するための、1記載のアルデヒド除去組成物。121~11のいずれか1記載のアルデヒド除去組成物を含有する飲食品。本明細書は本願の優先権の基礎である日本国特許出願2010114008号の明細書及び又は図面に記載される内容を包含する。本発明によれば、飲酒習慣に伴う上部消化管の発癌リスクを高めるアセトアルデヒド及び臭いの原因であるアルデヒドを分解除去し、上部消化管の発癌リスク因子及び臭いの原因を根本的に除去することができる組成物が提供される。以下、本発明を詳細に説明する。本発明に係るアルデヒド除去組成物は、アルデヒド分解活性を有するグルコノバクター属に属する微生物又はその抽出物若しくは菌体破砕物を含有するものである。該グルコノバクター属に属する微生物はアルデヒド生成活性よりもアルデヒド分解活性が高く、またアルデヒド濃度と比較してアルコール濃度が高い条件下でアルデヒドを分解できるものである。本発明に係る組成物は、飲酒習慣に伴う上部消化管の発癌リスクを高めるアセトアルデヒド及び臭いの原因であるアルデヒドの分解除去のために使用でき、上部消化管癌罹患リスク低減組成物又は臭い除去組成物として使用することができる。ここで、上部消化管癌としては、例えば口腔癌、咽頭癌及び食道癌が挙げられる。WHOのIARCによる発癌物質の分類表によれば、飲酒に伴うアセトアルデヒドは2010年にGroup1に分類され、ヒトに対して確実に発癌性があると認められている。飲酒に伴うアセトアルデヒドの発癌濃度は2ppm50microMと見積もられている。従って、本発明に係るアルデヒド除去組成物により口腔内のアセトアルデヒドを即座に2ppm以下に下げることができれば、本発明に係る組成物は発癌リスクを低減できると見なすことができる。本発明に係る組成物によれば、服用により飲酒後の口腔内のアセトアルデヒドを分解除去し、飲酒習慣に伴う上部消化管の発癌リスクを高めるアセトアルデヒドを根本的に除去することができる。一方、臭いとしては、例えばアセトアルデヒドを原因とする熟柿臭、ノネナールを原因とする加齢臭等の体臭、ヘキサナールを原因とする青臭さが挙げられる。例えば、本発明に係る組成物によれば、服用により飲酒後の口腔内の熟柿臭物質であるアセトアルデヒドを分解除去し、臭いの原因を根本的に除去することができる。また、本発明に係る組成物を体臭除去に使用することもできる。さらに、本発明に係る組成物を豆乳等の飲食品における青臭さ除去に使用することもできる。また、本発明においてアルデヒド化合物としては、例えばアセトアルデヒド、ノネナール、ヘキサナール等が挙げられる。本発明に使用する微生物は、アルデヒド生成活性よりもアルデヒド分解活性が高く、またアルデヒド濃度と比較してアルコール濃度が高い条件下でアルデヒドを分解できるものである。換言すれば、本発明に使用する微生物は、アセトアルデヒド等のアルデヒドに対して大過剰のエタノール等のアルコールが存在する条件下でもアルデヒドを効率的に分解できるものである。例えばエタノール存在下でもアセトアルデヒドを生成せず、また飲酒後の口腔内の状態を模倣した酒類唾液混合系においてもエタノールからアセトアルデヒドを生成することなくアセトアルデヒドを分解することができ、且つ分解反応中に過酸化水素等の有害物質を生成することがないグルコノバクター属に属する微生物である。このようなグルコノバクター属に属する微生物としては、例えばGluconobacterkondonii、Gluconobacterkanchanaburiensis等の種に属する微生物が挙げられる。また、本発明に使用できる代表的な菌株としては、GluconobacterkondoniiNBRC3266及びGluconobacterkanchanaburiensisNBRC103587が挙げられる。これら菌株は、独立行政法人製品評価技術基盤機構の生物遺伝資源部門から入手することができる。さらに、本発明に使用する微生物としては、グルコノバクター属細菌であって、エタノール存在下でアセトアルデヒドを生成せずアセトアルデヒドを効率よく分解しうる微生物、又は酒類唾液混合系においてもエタノールからアセトアルデヒドを生成することなくアセトアルデヒドを分解し、且つ分解反応中に過酸化水素等の有害物質を生成することがない微生物であれば、野生株、変異株のいずれであってもよい。ここで、エタノール存在下でアセトアルデヒドを生成しないとは、エタノールを全く酸化しないか、又は弱いエタノール酸化活性を有していてもそれがアセトアルデヒド酸化活性に比べて極めて弱いことをいう。例えば、エタノール酸化活性がアセトアルデヒド酸化活性の110程度、好ましくは150程度である。また、変異株は、例えば従来からよく用いられている変異剤であるエチルメタンスルホン酸による変異処理、ニトロソグアニジン、メチルメタンスルホン酸等の他の化学物質処理、紫外線照射、あるいは変異剤処理なしで得られる自然突然変異によって取得することができる。一方、多数の微生物種の中からアセトアルデヒド分解能の高い微生物を探索し、多くの酢酸菌グルコン酸菌とシュードモナス属細菌に強い活性を認めた。しかしながら、これらの微生物はエタノール存在下ではアセトアルデヒド生成能を示し、また、ビール等の食品中の成分や唾液中の成分がこうしたアセトアルデヒド生成活性をさらに増大させることが判った。そこで、さらに本発明に係る組成物に使用する微生物は、例えば、以下のようにして同定することができる。例えば、酒類唾液混合系において、エタノールからアセトアルデヒドを生成することなくアセトアルデヒドを特異的に分解する微生物を探索する。これらの要件を満たす菌株は、一例として次のようにスクリーニングすることによって得ることができる。1果実表皮の洗浄液、発酵食品、ヒトの腸内容物等を適切な選択培地に塗布し、2生育したコロニーを分離し、3エタノール存在下でアセトアルデヒドを生成せずアセトアルデヒドを効率よく分解しうる微生物株を選別する。さらに、4酒類唾液混合系においてもエタノールからアセトアルデヒドを生成することなくアセトアルデヒドを分解することができる微生物を得る。5アセトアルデヒド分解反応中の過酸化水素の生成の有無を、ペルオキシダーゼを用いた比色定量法により確認する。また、本発明においては、アセトアルデヒドの他に、臭いの原因物質であるノネナール、ヘキサナール等の他のアルデヒド分解活性を有する微生物を使用することもできる。当該微生物は、上記アセトアルデヒド分解活性を有する微生物のスクリーニングに準じて同定することができる。本発明に使用する微生物の生育に使用する培地は、例えば当該微生物が資化しうる炭素源及び窒素源を含有するものとすることができる。窒素源としては、例えば有機窒素源等が挙げられる。さらに所望により、培地はナトリウムイオン、カリウムイオン、カルシウムイオン、マグネシウムイオン等の陽イオンと硫酸イオン、塩素イオン、リン酸イオン等の陰イオンとから成る塩類を含んでもよい。さらに、培地は、ビタミン類、各酸類等の微量要素を含有することもできる。培地における炭素源の濃度は、例えば01~10程度である。また、培地における窒素源の濃度は、種類により異なるが、例えば001~5程度である。さらに、培地における無機塩類の濃度は、例えば0001~1程度である。好ましくは、アセトアルデヒドを分解できない微生物の混入を除く目的で、培地中にアセトアルデヒドを添加する。添加するアセトアルデヒドの濃度は適宜決定できるが、01が好ましい。本発明に使用する微生物の生育条件としては、例えば温度20°C~30°C及びpH50~70下で1~3日間が挙げられる。微生物の菌体は、培養後の培養液に懸濁した状態で本発明に係る組成物のために用いてもよいし、あるいは遠心分離等の通常の方法によって培養液から回収又は濃縮したものを用いてもよい。回収又は濃縮した菌体は、適当な担体に固定化し、固定化菌体として用いることもできる。あるいは、回収又は濃縮した菌体は、凍結乾燥等の通常の方法によって粉末状として用いてもよい。本発明に係る組成物は、例えば当該菌体粉末と各種賦形剤とを混合し、散剤、錠剤、カプセル剤等の剤形とすることができる。また、微生物から、例えば超音波破砕や界面活性剤処理等の通常の方法によって細胞抽出物又は酵素抽出画分等の抽出物あるいは菌体破砕物を調製し、本発明に係る組成物に使用することもできる。これら抽出物及び菌体破砕物はそのまま用いてもよいし、あるいは適当な担体に固定化して固定化酵素として用いてもよい。飲酒後の口腔内のアセトアルデヒドを除去すべく、例えば含有する微生物の乾燥菌体5mg~80mg、好ましくは10mg~60mgを服用するように、本発明に係る組成物を服用することができる。一方、本発明に係る飲食品は、本発明に係る組成物を含有するものである。例えば、本発明に係る微生物を飲食品に添加することで、上部消化管癌の発癌リスクを低減する飲食品又は口腔内における熟柿臭予防飲食品とすることができる。本発明に係る飲食品は、例えば、生菌体、死菌体、固定化菌体、細胞抽出液、菌体破砕物、微生物から精製されたアセトアルデヒド分解酵素標品等の本発明に係る組成物を含有する。本発明に係る飲食品によれば、本発明に係る組成物を摂取することによって、体内に存在するか又は発生したアセトアルデヒドを除去することができる。本発明に係る飲食品には、アセトアルデヒド除去効果を有する限りにおいて、甘味料、酸味料、香料、酸化防止剤等を適宜加えても良い。具体的な製品形態としては、例えばトローチ、ガム、キャンデー、錠剤、散剤、ドリンク剤、ヨーグルト等が挙げられる。添加物の添加法や食品又は飲料等への加工法は、製品の性質等を考慮しつつ、適宜選択し、実施することができる。以下、実施例を用いて本発明をより詳細に説明するが、本発明の技術的範囲はこれら実施例に限定されるものではない。比較例1グルコノバクターオキシダンス細胞抽出液による様々な飲料中でのアセトアルデヒド生成グルコン酸培地2グルコン酸ナトリウム、03グルコース、03酵母エキス、02ペプトン50mLを用いて、GluconobacteroxydansJCM7642株を30°Cで3日間前培養した。次いで、前培養後の培養液10mLを同組成の培地1Lに加え、30°Cで3日間培養した。培養後、菌体は遠心分離により回収した。菌体1gを100mMリン酸カリウム緩衝液に懸濁し、細胞を超音波破砕した50μLと飲料550μLを混合し、37°Cで10分間インキュベートした。コントロールとして、ビールにもともと含まれる濃度のアセトアルデヒドとエタノール5を含有する水溶液も試験した。反応液に60μLの6M過塩素酸を加えることにより反応を停止した。反応液中のアセトアルデヒド濃度はヘッドスペースガスクロマトグラフ法によって測定した。ヘッドスペースガスクロマトグラフ法によるアセトアルデヒド濃度測定は、PerkinElmerTurboMatrix40型ヘッドスペースオートサンプラーを使用し、INNOWAX19091N233キャピラリーカラム長さ30m、内径025mm、フィルム025μmを装着したSHIMADZUGC2010型ガスクロマトグラフを使用することにより行った。アセトアルデヒド測定結果を図1に示す。図1に示すように、ビールにおいて特に著しいアセトアルデヒドの生成が見られた。JCM7642株はアセトアルデヒド分解能を有する微生物として知られているが、当該結果は、ビールの飲酒後に本菌を服用すると、この微生物細胞内に共存する強いエタノール酸化活性によって、口腔のアセトアルデヒドの濃度がむしろ上昇してしまう危険性があることを示している。比較例2各種のGluconobacter属微生物の菌体とエタノールの反応5種のGluconobacter属微生物JCM21279、グルコノバクターセリナスJCM20277、グルコノバクターエスピーJCM20280、グルコノバクタータイランディカスJCM12310及びGoxydansJCM7642を、アセトバクター寒天培地10グルコース、1酵母エキス、3炭酸カルシウム、15寒天上で30°Cで3日間培養した。培養後、一白金耳分の菌体を生理食塩水50μLに懸濁した。5エタノールを含む50mMリン酸緩衝液にこの菌体懸濁液50μLを添加し、37°Cで10分間インキュベートした。反応液に60μLの6M過塩素酸を加えることにより反応を停止した。反応液に含まれるアセトアルデヒドを比較例1で述べた方法によって測定した。アセトアルデヒド測定結果を図2に示す。図2に示すように、いずれの微生物も2ppm以上のアセトアルデヒドを生成した。Gluconobacter属細菌は一般にアセトアルデヒド分解能を有する微生物として知られているが、当該結果は、アルコール飲料の摂取後にこれらの微生物を服用すると、これらの微生物細胞内に共存する強いエタノール酸化活性によって、口腔内のアセトアルデヒドの濃度がむしろ上昇してしまう危険性があることを示している。比較例3Pseudomonas属微生物の菌体とエタノールの反応アセトアルデヒド分解微生物として知られるPseudomonasspAL5株を培地15寒天上で30°Cで3日間培養した。培養後、一白金耳分の菌体を生理食塩水50μLに懸濁した。5エタノールを含む50mMリン酸緩衝液にこの菌体懸濁液50μLを添加し、37°Cで10分間インキュベートした。反応液に60μLの6M過塩素酸を加えることにより反応を停止した。反応液に含まれるアセトアルデヒドを比較例1で述べた方法によって測定した。測定の結果、同微生物の菌体は178ppmのアセトアルデヒドを生成した。当該結果は、アルコール飲料の摂取後にこの微生物を服用すると、これらの微生物細胞内に共存する強いエタノール酸化活性によって、口腔内のアセトアルデヒドの濃度がむしろ上昇してしまう危険性があることを示している。実施例1Gluconobacter属微生物の菌体とビールの反応グルコノバクターフラツリイJCM20278、GkondoniiNBRC3266及びGkanchanaburiensisNBRC103587を比較例1で述べた方法と同様にして培養した。次いで、これら3種の微生物並びに比較例2で述べた5種のGluconobacter属微生物を、それぞれ600nmにおける光学濁度が約09となるように500μLのMilliQ水に懸濁した。250μLの50mMリン酸緩衝液と300μlのビールを混合し、50μLの菌体懸濁液を添加して37°Cで10分間インキュベートした。反応液に60μLの6M過塩素酸を加えることにより反応を停止した。各反応液に含まれるアセトアルデヒドを比較例1で述べた方法によって測定した。その結果、Gasaii、Gcerinus、Gfrateurii、Gluconobactersp、Gthailandicus及びGoxydans添加系では、それぞれ22ppm、8ppm、32ppm、9ppm、43ppm及び17ppmのアセトアルデヒドの生成が認められた。このことは、これら6種のグルコノバクターについては、ビール中の未知成分により、微生物細胞内に共存するエタノール酸化活性が高度に活性化され、飲酒後の口腔内のアセトアルデヒドの濃度がむしろ上昇してしまう危険性があることを示している。一方、GkondoniiNBRC3266及びGkanchanaburiensisNBRC103587については、そうした未知成分の存在下でもアセトアルデヒド分解活性がアセトアルデヒド生成活性を大幅に上回っており、ビールにもともと含まれていたアセトアルデヒド35ppmを分解した残存アセトアルデヒド濃度:02ppm。このことは以下の実施例2においてもさらに再現性よく確認された。実施例2Gluconobacterkondoniiの凍結乾燥菌体を用いる唾液中のアセトアルデヒドの除去GkondoniiNBRC3266を実施例1で述べた方法により培養し、得られた菌体を凍結乾燥に供した。凍結乾燥菌体約30mgをMilliQ水500μLに懸濁した。アセトアルデヒド初濃度25ppm及び95ppmを含有するビール唾液混合液測定結果を図3に示す。図3に示すように、01エタノールやビール唾液混合系でもアセトアルデヒドの生成はなく、ビール唾液混合系中のアセトアルデヒドは凍結乾燥菌体によって効率よく分解された。一方、反応時間を0、2、5、10分間に設定した以外は、上記と同様にして得られた反応液に、20mM24ジクロロフェノール005mL、20mM4アミノアンチピリン005mL、水02mL及び10mgmL西洋ワサビペルオキシダーゼ01mLを添加し、この反応液の505nmにおける吸光度が一定値を示すまで、室温で20分間インキュベートした。505nmにおける吸光度の増加から反応液に含まれる過酸化水素の濃度を見積もった。その結果、全ての反応液中の過酸化水素濃度は本方法の検出限界05μM以下であった。実施例3アセトアルデヒドの除去のタイムコースと比活性GkondoniiNBRC3266を実施例1で述べた方法により培養し、得られた菌体を凍結乾燥に供した。凍結乾燥菌体10mgをMilliQ水500μLに懸濁した。ビールと50mMリン酸カリウム緩衝液の1:1混合液を調製し、アセトアルデヒドを78ppmとなるように添加した。この混合液550μLにそれぞれ異なる菌体濃度の菌体懸濁液50μLを添加して37°Cでインキュベートした。0、1、3、5及び10分間反応後、反応液に60μLの6M過塩素酸を加えることにより反応を停止した。反応液に含まれるアセトアルデヒドを比較例1で述べた方法によって測定した。アセトアルデヒド測定の結果、反応系中のアセトアルデヒドは、この菌体量では1分間でほぼ完全に分解することがわかった。このことから、当該条件下におけるGkondoniiNBRC3266の凍結乾燥菌体1mgあたりのアセトアルデヒド分解速度は39μgmin11と見積もられた。実施例4アセトアルデヒドの除去における菌体量の影響GkondoniiNBRC3266を実施例1で述べた方法により培養し、得られた菌体を凍結乾燥に供した。凍結乾燥菌体10mgをMilliQ水500μLに懸濁した。これをさらにMillQ水で希釈することにより異なる菌体濃度の懸濁液を調製した。25エタノールを含有する25mMリン酸カリウム緩衝液を調製し、アセトアルデヒドを溶解した。この混合液550μLに各菌体濃度に調整した菌体懸濁液50μLを添加して、37°Cで1分間又は5分間反応させた。1分間及び5分間反応におけるアセトアルデヒド初濃度はそれぞれ101ppm及び111ppmであった。反応液に60μLの6M過塩素酸を加えることにより反応を停止した。反応液に含まれるアセトアルデヒドを比較例1で述べた方法によって測定した。アセトアルデヒド測定結果を図4に示す。図4において、白抜きの丸は1分間反応を示し、黒塗りの丸は5分間反応を示す。図4から判るように、5分間の反応では05mgの菌体を、また1分間の反応では10mgの菌体を用いることにより90以上のアセトアルデヒドを除去することができる。また、この実施例から菌体のアセトアルデヒド除去速度はおよそ39μgmin11と見積もられた。実施例5間欠的に添加されたアセトアルデヒドの除去GkondoniiNBRC3266を実施例1で述べた方法により培養し、得られた菌体を凍結乾燥に供した。凍結乾燥菌体30mgをMillQ水500μLに懸濁した。15エタノールを含有する25mMリン酸カリウム緩衝液を調製し、アセトアルデヒドを約10ppmとなるように溶解し、37°Cに保った。この反応系を添加し、37°Cで3分間インキュベートしたところで、反応系から200μLをサンプリングして、これを20μLの6M過塩素酸と混合し、反応を停止した。また、残りの反応液の添加を水濃度をプロットした結果を図5に示す。コントロール実験では、アセトアルデヒド添加のたびにその濃度が累積的に増加していくのに対し、菌体添加系ではアセトアルデヒドの濃度は01~08ppmに保たれた。実施例6アセトアルデヒドの除去におけるエタノール濃度の影響GkondoniiNBRC3266を実施例1で述べた方法により培養し、得られた菌体を凍結乾燥に供した。凍結乾燥菌体10mgをMilliQ水500μLに懸濁した。各濃度のエタノールを含有する25mMリン酸カリウム緩衝液を調製し、6~8ppmのアセトアルデヒドを溶解した。この混合液550μLに菌体懸濁液を添加して、37°Cで5分間反応させた。反応液に60μLの6M過塩素酸を加えることにより反応を停止した。反応液に含まれるアセトアルデヒドを比較例1で述べた方法によって測定した。その結果、同菌体は、10までの濃度のエタノールを含有する反応系では、ほぼ全量のアセトアルデヒドを効率よく分解したのアセトアルデヒドを溶解した。この混合液550μLに菌体懸濁液を添加して、37°Cで5分間反応させた。反応液に60μLの6M過塩素酸を加えることにより反応を停止した。反応液に含まれるアセトアルデヒドを比較例1で述べた方法によって測定した。アセトアルデヒド測定結果を図6に示す。図6は、初濃度105±05ppmのアセトアルデヒドをGluconobacter属菌体で分解したときのアセトアルデヒドの残存濃度を示す。図6に示すように、同菌体はpH2~10の幅広い範囲にわたってアセトアルデヒド分解能力を示した。特に酸性領域で十分な分解活性が認められ、胃や腸内でも同菌体は優れたAcH分解能を示す可能性が示唆された。以上の実施例の結果から、飲酒後の口腔内のアセトアルデヒドを除去するために必要な菌体量が次のように見積もられる。GkondoniiNBRC3266の凍結乾燥菌体1mgあたりのアセトアルデヒド分解速度は4~5μgmin11である。飲酒後の唾液中のアセトアルデヒドの濃度は、多くの場合2~4ppmの範囲にあると報告されている。また、例えば10分間のガムをかんだ後に分泌される標準的な唾液量として11mlという値が示されており、これを口腔内に存在する唾液量と見なすものとする。仮に、飲酒後の口腔内の11mlの唾液中に10ppmのアセトアルデヒドが存在するとき、30mgの凍結乾燥菌体を口腔内に存在させれば、1分以内にアセトアルデヒドを消去することができると予想される。さらに、実施例5の結果から、10ppmのアセトアルデヒドを含有する唾液が唾液腺から1分間あたり1mlの割合で分泌されるとしても、その間60mgの凍結乾燥菌体が口腔内に存在していれば、口腔内アセトアルデヒド濃度は02ppm程度以下に保たれることが予想される。実施例8臭い物質の除去GkondoniiNBRC3266を実施例1で述べた方法により培養し、得られた菌体を凍結乾燥に供した。凍結乾燥菌体10mgをMilliQ水500μLに懸濁した。05ppmノネナール又は05ppmヘキサナールを含有する25mMリン酸カリウム緩衝液550μLに菌体懸濁液を添加して、37°Cで5分間反応させた。反応液に60μLの6M過塩素酸を加えることにより反応を停止した。反応液に含まれるノネナール又はヘキサナールを比較例1で述べた方法と同じ方法によって測定した。その結果、菌体はこれらのアルデヒドを効率よく分解し、反応停止後の反応液にノネナール又はヘキサナールを検出することはできなかった。実施例9飲酒後の口腔内のアセトアルデヒド除去におけるグルコノバクターコンドニイ細胞摂取の効果被験者51歳、体重70kg;ALDH211は、朝食食パン、野菜、牛乳を朝6時にとり、11時間絶食した。飲酒前に唾液採取用のチューインガムを噛み、唾液2mlをサンプリングした。ウイスキー山崎10年、アルコール度数40度をミネラルウオーターで希釈し、水割りアルコール度数13度;アセトアルデヒド濃度182ppmを調製した。この水割り90mlを8分間かけて摂取し、これを4回繰り返すことにより、32分間で合計360mlの水割りを摂取したアルコール摂取総量:47g;067g体重kg。この間、副食おつまみはとらなかった。全量飲酒後、直ちに唾液採取用のチューインガムを噛み、2mlの唾液を採取した。採取した唾液は直ちに氷冷し、その500μlを50μlの6M過塩素酸と混合した。グルコノバクターコンドニイ細胞非服用区2回:controlでは、飲酒完了5分、30分、60分、90分、120分、180分後にそれぞれ2mlの唾液を採取した。一方、グルコノバクターコンドニイ細胞服用区では、最初の唾液採取後直ちにグルコノバクターコンドニイ細胞凍結乾燥品30mgを服用し、口腔内に均一に分散させた。第1回目の実験では、服用5分間後に唾液採取用のチューインガムを噛み、2mlの唾液を菌体とともに採取した。第2回目の実験では、服用5分間後に菌体を飲み込んでから、唾液採取用のチューインガムを噛み、2mlの唾液を採取した。飲酒完了30分、60分、90分、120分、180分後に、それぞれ2mlの唾液を採取した。第2回目の実験では、飲酒完了15分後にも唾液を採取した。採取した唾液中のアセトアルデヒド濃度をヘッドスペースガスクロマトグラフィーで測定したn2。なお、実験は全て同一の被験者により実施され、次の実験まで2日以上の間隔が設けられた。また服用したグルコノバクターコンドニイ細胞の比活性は4Umgであった。飲酒後の口腔内アセトアルデヒド濃度の推移を図7に示す。図7において、横軸は飲酒後の時間を示す。飲酒直後に25ppm程度のパルス的なアセトアルデヒドの濃度上昇が見られた。グルコノバクターコンドニイ細胞非服用では、その後およそ1時間にわたって口腔内のアセトアルデヒドは18ppmの濃度で推移し、90分後に11ppm、120分後に09ppm、180分後に06ppmとなった。一方、グルコノバクターコンドニイ細胞服用区では、服用後直ちに口腔内のアセトアルデヒドは05ppmにまで減少し、菌体の吐き出し又は飲み込み後に再び上昇し、飲酒完了30分後に14ppm、1時間後に11ppm、90分後に08ppmとなった。口腔内アセトアルデヒドの濃度は、飲酒120分後及び180分後においてグルコノバクターコンドニイ細胞非服用の場合と有意な差はなかったが、飲酒後90分間まではグルコノバクターコンドニイ細胞の服用による口腔内アセトアルデヒド濃度は、非服用よりも有意に低かった。本実験により、口腔内アセトアルデヒドがいったん除去された後、菌体が除去されればアセトアルデヒド濃度は再び上昇に転じることが初めてわかった。これは、体内平衡濃度のアセトアルデヒド1~15ppmを含む唾液が唾液腺から持続的に分泌されるためか、あるいは体内の残存エタノールからアセトアルデヒドが持続的に生成するためであると思われる。しかしながら、飲酒後90分間まではグルコノバクターコンドニイ細胞の服用時の口腔内アセトアルデヒド濃度は非服用時よりも有意に低いことは注目に値する。これは口腔内の微細構造にグルコノバクターコンドニイ細胞が捕捉されるなどして残存し、アセトアルデヒドを分解するためではないかと推察される。剤型処方により口腔内にグルコノバクターコンドニイ細胞をより長時間定着させるような工夫を施せば、口腔内アセトアルデヒド濃度をより効果的に低レベルに維持できる可能性が示唆された。実施例10食品へのグルコノバクターコンドニイ細胞添加による影響GkondoniiNBRC3266を実施例1で述べた方法により培養し、得られた菌体を凍結乾燥に供した。得られた菌体と下記の表1に示す食品との組み合わせによるアセトアルデヒド生成の可能性を調べた。予め37°Cでプレインキュベートした食品400μlに菌体懸濁液20mgdrywtmL50μldrywt1mgを加え、37°Cで5分間反応させ、50μlの6M過塩素酸と混合した。次いで、AcH含有量の変化をヘッドスペースガスクロマトグラフィーにて測定した。その結果、表1に挙げた食品と菌体との混合で有意なAcH生成は認められなかった。本明細書で引用した全ての刊行物、特許及び特許出願をそのまま参考として本明細書にとり入れるものとする。