"植物における3デオキシアントシアニジン合成を誘導するタンパク質をコードする、下記a~dのいずれかに記載のDNA。a配列番号:3に記載のアミノ酸配列からなるタンパク質をコードするDNAb配列番号:1または2に記載の塩基配列のコード領域を含むDNAc配列番号:3に記載のアミノ酸配列において1もしくは複数のアミノ酸が置換、欠失、付加、および/または挿入されたアミノ酸配列からなるタンパク質をコードするDNAd配列番号:1または2に記載の塩基配列からなるDNAとストリンジェントな条件でハイブリダイズするDNA植物における3デオキシアントシアニジン合成を抑制するタンパク質をコードする、下記a~dのいずれかに記載のDNA。a配列番号:6に記載のアミノ酸配列からなるタンパク質をコードするDNAb配列番号:4または5に記載の塩基配列のコード領域を含むDNAc配列番号:6に記載のアミノ酸配列において1もしくは複数のアミノ酸が置換、欠失、付加、および/または挿入されたアミノ酸配列からなるタンパク質をコードするDNAd配列番号:4または5に記載の塩基配列からなるDNAとストリンジェントな条件でハイブリダイズするDNA植物における3デオキシアントシアニジン合成を抑制するRNAをコードする、下記a~cのいずれかに記載のDNA。a請求項1に記載のDNAの転写産物と相補的な二重鎖RNAをコードするDNAb請求項1に記載のDNAの転写産物と相補的なアンチセンスRNAをコードするDNAc請求項1に記載のDNAの転写産物を特異的に開裂するリボザイム活性を有するRNAをコードするDNA植物に病原性糸状菌に対する感受性を付与する活性を有するタンパク質をコードする、下記a~dのいずれかに記載のDNA。a配列番号:3に記載のアミノ酸配列からなるタンパク質をコードするDNAb配列番号:1または2に記載の塩基配列のコード領域を含むDNAc配列番号:3に記載のアミノ酸配列において1もしくは複数のアミノ酸が置換、欠失、付加、および/または挿入されたアミノ酸配列からなるタンパク質をコードするDNAd配列番号:1または2に記載の塩基配列からなるDNAとストリンジェントな条件でハイブリダイズするDNA植物に病原性糸状菌に対する抵抗性を付与する活性を有するタンパク質をコードする、下記a~dのいずれかに記載のDNA。a配列番号:6に記載のアミノ酸配列からなるタンパク質をコードするDNAb配列番号:4または5に記載の塩基配列のコード領域を含むDNAc配列番号:6に記載のアミノ酸配列において1もしくは複数のアミノ酸が置換、欠失、付加、および/または挿入されたアミノ酸配列からなるタンパク質をコードするDNAd配列番号:4または5に記載の塩基配列からなるDNAとストリンジェントな条件でハイブリダイズするDNA植物に病原性糸状菌に対する抵抗性を付与する活性を有するRNAをコードする、下記a~cのいずれかに記載のDNA。a請求項4に記載のDNAの転写産物と相補的な二重鎖RNAをコードするDNAb請求項4に記載のDNAの転写産物と相補的なアンチセンスRNAをコードするDNAc請求項4に記載のDNAの転写産物を特異的に開裂するリボザイム活性を有するRNAをコードするDNA請求項1から6のいずれかに記載のDNAを含むベクター。請求項1から6のいずれかに記載のDNAが導入された植物細胞。請求項8に記載の細胞を含む植物体。請求項9に記載の植物体の子孫またはクローンである、植物体。請求項9または10に記載の植物体の繁殖材料。植物における請求項4に記載のDNAの発現または機能を抑制することを特徴とする、病原性糸状菌に対する抵抗性が付与された植物の作出方法。植物に請求項5または6に記載のDNAを導入する工程を含む、病原性糸状菌に対する抵抗性が付与された植物の作出方法。請求項5もしくは6に記載のDNA、または該DNAが挿入されたベクターを含む、病原性糸状菌に対する抵抗性を付与するための薬剤。植物における病原性糸状菌に対する感受性または抵抗性を判定する方法であって、被検植物における請求項4もしくは5に記載のDNAまたはその発現制御領域の塩基配列を解析し、対照の塩基配列と比較することを特徴とする方法。植物における病原性糸状菌に対する感受性または抵抗性を判定する方法であって、被検植物における請求項4もしくは5に記載のDNAの発現または発現産物の分子量を検出することを特徴とする方法。植物における病原性糸状菌に対する感受性または抵抗性を判定する方法であって、被検植物における、請求項4または5に記載のDNAと連鎖する分子マーカーの塩基配列を解析し、対照の塩基配列と比較することを特徴とする方法。病原性糸状菌に対する抵抗性の植物を育種する方法であって、a病原性糸状菌に対する抵抗性の植物品種と任意の植物品種とを交配させる工程、b工程aにおける交配により得られた個体における病原性糸状菌に対する感受性または抵抗性を、請求項15から17のいずれかに記載の方法により判定する工程、およびc病原性糸状菌に対する抵抗性を有すると判定された品種を選抜する工程、を含む方法。請求項18に記載の方法により育種された植物体。請求項19に記載の植物体の子孫またはクローンである、植物体。請求項19または20に記載の植物体の繁殖材料。本発明は、このような状況に鑑みてなされたものであり、その目的は、ソルガムにおける3デオキシアントシアニン合成経路や、紋枯病等に対する抵抗性と関連性を有するtan形質をもたらす遺伝子を同定することにある。さらに、本発明は、ソルガムにtan形質をもたらす遺伝子に対応する他の植物における遺伝子を同定することを目的とする。また、本発明は、同定された遺伝子に基づき、植物のtan形質を簡便に判定する方法を提供することを目的とする。さらなる本発明の目的は、解明されたtan形質の発症の機構に基づき、tan形質を導入した植物を効率的に作出する方法を提供することにある。本発明者らは、上記課題を解決すべく、ソルガムで病害により紫色purpleを示す品種、那系MS3Bとtan形質の品種Greenleafの大規模な交配集団F3F5において、ソルガムのSSRマーカーおよび挿入欠失マーカーを利用して、tan遺伝子のマッピングを行った図1、図2。具体的には、まず、F5のRIL個体組換え自殖系統RecombinatInbredLine、143個体について、SSRマーカーを用いたラフマッピングの結果から、tan遺伝子が染色体6番に座乗していることを解明した。次いで、F3部分へテロ集団個体1142個体について、SSRマーカーSB3751からSB3764の間で組換えのある個体63個体を選抜し、圃場にてtan形質の調査を行い、tan遺伝子の存在領域を、約150kbpの領域に絞り込んだ。さらに、ソルガム品種BTx623の塩基配列情報に基づいて見出したCAPSマーカー、SNPマーカーを用いたマッピングを行い、tan遺伝子の存在領域を最終的に約29kbpの領域に絞り込んだ。本発明者らが、絞り込んだ領域における遺伝子のアノテーションをデーターベースで調査したところ、この領域はトウモロコシのロイコアントシアニジンレダクターゼに相同性を持つ遺伝子がクラスターを作っていることが判明した。この絞り込んだ領域内には4つのトウモロコシのロイコアントシアニジンレダクターゼに相同性を持つ候補遺伝子が存在した。この4つの遺伝子の発現をRTPCRにて調査したところ、候補遺伝子のうち、特定の候補遺伝子Sb06g029550、以下、場合によりtan遺伝子又は感受性型tan遺伝子とも称するの発現パターンのみが、ソルガムが障害により紫色を呈するときに遺伝子の発現が増加することを見出した図4。また、残りの遺伝子の発現はRTPCRでは見られなかった。このことから、この遺伝子が着色の原因遺伝子であると推測された。tan遺伝子周辺の塩基配列を決定し、そのコードするアミノ酸配列を品種間で比較したところ、紫色を呈する品種の那系MS3Bでは、タンパク質をコードする遺伝子領域がすでにゲノム塩基配列が明らかになっている品種、BTx623と完全に一致していた図5。しかしながら、Greenleafのtan遺伝子以下、抵抗性型tan遺伝子とも称するがコードするアミノ酸配列において、感受性型tan遺伝子がコードするアミノ酸配列と配列の異なる2つの箇所が見出された。その結果、tan形質のGreenleafでは、tan遺伝子がコードする正常なタンパク質が合成されないと推測された図5。また、外的障害を受けたtan形質を示すソルガムにおいては、3デオキシアントシアニジンアピゲニニジン及びルテオリニジンの代わりに、ルテオリン等が蓄積されていることが明らかになった図6~8。さらに、抵抗性型tan遺伝子とすす紋病に対する抵抗性との相関が明らかになった図10。これらの事実から、tan遺伝子はソルガムの着色にかかわる遺伝子であり、その発現抑制や変異によって、本来の機能が発揮されず、3デオキシアントシアニジンが合成されないないことにより、個体がtan形質を示すことが判明した。さらに、tan形質においては、外的障害を受けた際に、抗菌活性等を有するルテオリン等が蓄積することから、病原性糸状菌に対する抵抗性が発揮されることも判明した。以上の知見に基づいて、本発明者らは、同定されたtan遺伝子を標的として植物における病原性糸状菌に対する感受性または抵抗性を判定することが可能であり、さらに、見出された遺伝子が3デオキシアントシアニジンの合成反応の最終段階を行っている酵素であることから、tan遺伝子の発現や機能を抑制することにより、植物にtan形質由来の抵抗性を付与することが可能であることを見出し、本発明を完成するに至った。本発明は、より詳しくは、下記を提供するものである。<1>植物における3デオキシアントシアニジン合成を誘導するタンパク質をコードする、下記a~dのいずれかに記載のDNA。a配列番号:3に記載のアミノ酸配列からなるタンパク質をコードするDNAb配列番号:1または2に記載の塩基配列のコード領域を含むDNAc配列番号:3に記載のアミノ酸配列において1もしくは複数のアミノ酸が置換、欠失、付加、および/または挿入されたアミノ酸配列からなるタンパク質をコードするDNAd配列番号:1または2に記載の塩基配列からなるDNAとストリンジェントな条件でハイブリダイズするDNA<2>植物における3デオキシアントシアニジン合成を抑制するタンパク質をコードする、下記a~dのいずれかに記載のDNA。a配列番号:6に記載のアミノ酸配列からなるタンパク質をコードするDNAb配列番号:4または5に記載の塩基配列のコード領域を含むDNAc配列番号:6に記載のアミノ酸配列において1もしくは複数のアミノ酸が置換、欠失、付加、および/または挿入されたアミノ酸配列からなるタンパク質をコードするDNAd配列番号:4または5に記載の塩基配列からなるDNAとストリンジェントな条件でハイブリダイズするDNA<3>植物における3デオキシアントシアニジン合成を抑制するRNAをコードする、下記a~cのいずれかに記載のDNA。a<1>に記載のDNAの転写産物と相補的な二重鎖RNAをコードするDNAb<1>に記載のDNAの転写産物と相補的なアンチセンスRNAをコードするDNAc<1>に記載のDNAの転写産物を特異的に開裂するリボザイム活性を有するRNAをコードするDNA<4>植物に病原性糸状菌に対する感受性を付与する活性を有するタンパク質をコードする、下記a~dのいずれかに記載のDNA。a配列番号:3に記載のアミノ酸配列からなるタンパク質をコードするDNAb配列番号:1または2に記載の塩基配列のコード領域を含むDNAc配列番号:3に記載のアミノ酸配列において1もしくは複数のアミノ酸が置換、欠失、付加、および/または挿入されたアミノ酸配列からなるタンパク質をコードするDNAd配列番号:1または2に記載の塩基配列からなるDNAとストリンジェントな条件でハイブリダイズするDNA<5>植物に病原性糸状菌に対する抵抗性を付与する活性を有するタンパク質をコードする、下記a~dのいずれかに記載のDNA。a配列番号:6に記載のアミノ酸配列からなるタンパク質をコードするDNAb配列番号:4または5に記載の塩基配列のコード領域を含むDNAc配列番号:6に記載のアミノ酸配列において1もしくは複数のアミノ酸が置換、欠失、付加、および/または挿入されたアミノ酸配列からなるタンパク質をコードするDNAd配列番号:4または5に記載の塩基配列からなるDNAとストリンジェントな条件でハイブリダイズするDNA<6>植物に病原性糸状菌に対する抵抗性を付与する活性を有するRNAをコードする、下記a~cのいずれかに記載のDNA。a<4>に記載のDNAの転写産物と相補的な二重鎖RNAをコードするDNAb<4>に記載のDNAの転写産物と相補的なアンチセンスRNAをコードするDNAc<4>に記載のDNAの転写産物を特異的に開裂するリボザイム活性を有するRNAをコードするDNA<7><1>から<6>のいずれかに記載のDNAを含むベクター。<8><1>から<6>のいずれかに記載のDNAが導入された植物細胞。<9><8>に記載の細胞を含む植物体。<10><9>に記載の植物体の子孫またはクローンである、植物体。<11><9>または<10>に記載の植物体の繁殖材料。<12>植物における<4>に記載のDNAの発現または機能を抑制することを特徴とする、病原性糸状菌に対する抵抗性が付与された植物の作出方法。<13>植物に<5>または<6>に記載のDNAを導入する工程を含む、病原性糸状菌に対する抵抗性が付与された植物の作出方法。<14><5>もしくは<6>に記載のDNA、または該DNAが挿入されたベクターを含む、病原性糸状菌に対する抵抗性を付与するための薬剤。<15>植物における病原性糸状菌に対する感受性または抵抗性を判定する方法であって、被検植物における<4>もしくは<5>に記載のDNAまたはその発現制御領域の塩基配列を解析し、対照の塩基配列と比較することを特徴とする方法。<16>植物における病原性糸状菌に対する感受性または抵抗性を判定する方法であって、被検植物における<4>もしくは<5>に記載のDNAの発現または発現産物の分子量を検出することを特徴とする方法。<17>植物における病原性糸状菌に対する感受性または抵抗性を判定する方法であって、被検植物における、<4>または<5>に記載のDNAと連鎖する分子マーカーの塩基配列を解析し、対照の塩基配列と比較することを特徴とする方法。<18>病原性糸状菌に対する抵抗性の植物を育種する方法であって、a病原性糸状菌に対する抵抗性の植物品種と任意の植物品種とを交配させる工程、b工程aにおける交配により得られた個体における病原性糸状菌に対する感受性または抵抗性を、<15>から<17>のいずれかに記載の方法により判定する工程、およびc病原性糸状菌に対する抵抗性を有すると判定された品種を選抜する工程、を含む方法。<19><18>に記載の方法により育種された植物体。<20><19>に記載の植物体の子孫またはクローンである、植物体。<21><19>または<20>に記載の植物体の繁殖材料。なお、本発明において、tan形質により抵抗性が付与される病原性糸状菌とは植物に病害をもたらす糸状菌であればよく、例えば、紋枯病をもたらすThanatephoruscucumeris、すす紋病をもたらすSetosphaeriaturcica、炭疽病をもたらすColletotrichumgraminicolaが挙げられる。また、本発明において病原性糸状菌に対する感受性とは、植物が病原性糸状菌に感染する性質を意味する。また、本発明において病原性糸状菌に対する抵抗性とは、病原性糸状菌の感染に対する植物の抵抗性を意味する。この抵抗性により、植物において病原性糸状菌の感染症状の発症、あるいは、発生した症状の程度例えば、病斑形成の程度が抑制される。本発明によって、植物の病害虫等による外的障害に対する色素反応に関わり、病原性糸状菌に対する感受性をもたらす遺伝子tan遺伝子感受性型tan遺伝子が同定され、該遺伝子の染色体上の位置および構造、ならびにtan形質、ひいては3デオキシアントシアニン合成の機構や病原性糸状菌に対する抵抗性が発揮される機構が解明された。これにより、tan遺伝子やその近傍のマーカーを利用して、植物の病原性糸状菌に対する感受性および抵抗性を簡便に判定することが可能となった。また、感受性型tan遺伝子の発現や機能を抑制することにより、病原性糸状菌に対する抵抗性の植物品種を効率的に作出することが可能となった。本発明は、病原性糸状菌の病害による植物の収量低下の防止に大きく貢献するものである。<合成誘導型DNA、合成抑制型DNA、感受性型DNA、抵抗性型DNA>本発明は、植物における3デオキシアントシアニジン合成を誘導するタンパク質をコードするDNA以下、合成誘導型DNAとも称するを提供する。また、本発明は、植物に、病原性糸状菌に対する感受性を付与する活性を有するタンパク質をコードするDNA以下、感受性型DNAとも称するを提供する。本発明者らにより同定された、ソルガムの病虫害を受けた部位が紫色を示す品種であり、すす紋病等に対する感受性品種である那系MS3B由来のtancDNAの塩基配列を配列番号:1に、tanゲノムDNAの塩基配列を配列番号:2に、これらDNAがコードするタンパク質のアミノ酸配列を配列番号:3に示す。本発明の合成誘導型DNA又は感受性型DNA以下、感受性型DNA等とも称するの1つの態様は、配列番号:3に記載のアミノ酸配列からなるタンパク質をコードするDNA典型的には、配列番号:1または2に記載の塩基配列のコード領域を含むDNAである。現在の技術水準においては、当業者であれば、特定の感受性ソルガム品種例えば、那系MS3Bにおける感受性型DNA等の塩基配列情報が得られた場合、その塩基配列を改変し、そのコードするアミノ酸配列は異なるが、同じく合成誘導型又は感受性型であるDNAを取得することが可能である。また、自然界においても、塩基配列の変異によりコードするタンパク質のアミノ酸配列が変異することは起こり得ることである。従って、本発明は、那系MS3Bにおけるtanタンパク質のアミノ酸配列配列番号:3において1もしくは複数のアミノ酸が置換、欠失、付加、および/または挿入されたアミノ酸配列からなり、植物における3デオキシアントシアニジン合成を誘導するタンパク質をコードするDNA又は植物に病原性糸状菌に対する感受性を付与する活性を有するタンパク質をコードするDNAをも含むものである。ここで複数とは、改変後のtanタンパク質が、植物において3デオキシアントシアニジン合成を誘導できる範囲におけるアミノ酸の改変数、又は植物に病原性糸状菌に対する感受性を付与する活性を維持する範囲におけるアミノ酸の改変数であり、通常、50アミノ酸以内、好ましくは30アミノ酸以内、さらに好ましくは10アミノ酸以内例えば、5アミノ酸以内、3アミノ酸以内、2アミノ酸である。さらに、現在の技術水準においては、当業者であれば、特定の感受性ソルガム品種例えば、那系MS3Bから感受性型DNA等が得られた場合、その感受性型DNA等の塩基配列情報を利用して、他のソルガム品種や他の植物例えば、イネ、トウモロコシから、同じく合成誘導型である相同遺伝子をコードするDNA又は感受性型である相同遺伝子をコードするDNAを取得することが可能である。従って、本発明は、那系MS3BにおけるtanDNA配列番号:1または2とストリンジェントな条件でハイブリダイズするDNAであって、植物における3デオキシアントシアニジン合成を誘導するタンパク質をコードするDNA又は植物に病原性糸状菌に対する感受性を付与する活性を有するタンパク質をコードするDNAをも含むものである。こうして得られた変異DNAや相同DNAが、植物において3デオキシアントシアニジン合成を誘導するタンパク質をコードするか否かは、例えば、これらDNAを導入した、病虫害を受けた部位が黄褐色を示すtan形質の品種に、病原性糸状菌を噴霧もしくは接種し、又は該品種の成葉にカッティングもしくはパンチを施し、その後、病原性糸状菌の感染部位、又は、カッティングもしくはパンチ部位が紫色を呈するか否かを検定することにより、判定することができる。図1を参照のこと。また、こうして得られた変異DNAや相同DNAが、植物に病原性糸状菌に対する感受性を付与する活性を有するタンパク質をコードするか否かは、例えば、これらDNAを導入した抵抗性品種に、病原性糸状菌を噴霧もしくは接種し、その後、感染症状を示すか否か、あるいは感染症状の程度を検定することにより、判定することができる。感染症状としては、例えば、病斑を形成することが挙げられる。また、非特許文献2に記載されているように、tan形質の品種に紋枯病菌を接種し、その後に発病した個体の割合発病個体率や病班高率を指標に判定することができる。なお、病班高率RLHは、例えば、個体別に葉鞘高FHと病班高LHとを測定し、RLH=LH/FH×100の式で算出することによって得られる。本発明は、また、植物における3デオキシアントシアニジン合成を抑制するタンパク質をコードするDNA以下、合成抑制型DNAとも称するを提供する。さらに、本発明は、植物に病原性糸状菌に対する抵抗性を付与する活性を有するタンパク質をコードするDNA以下、抵抗性型DNAと称するを提供する。本発明者らにより同定された、ソルガムの、tan形質を示し、すす紋病等に対する抵抗性品種である、Greenleaf由来のtancDNAの塩基配列を配列番号:4に、tanゲノムDNAの塩基配列を配列番号:5に、これらDNAがコードするタンパク質のアミノ酸配列を配列番号:6に示す。本発明の合成抑制型DNA又は抵抗性型DNA以下、抵抗性型DNA等とも称するの1つの態様は、配列番号:6に記載のアミノ酸配列からなるタンパク質をコードするDNA典型的には、配列番号:4または5に記載の塩基配列のコード領域を含むDNAである。本実施例において示されたように、Greenleaf由来のtancDNAの塩基配列配列番号:4は、感受性品種那系MS3B由来のtancDNAの塩基配列配列番号:1と比較すると、755位と805位との塩基が相違する。このため、Greenleaf由来のtanタンパク質配列番号:6は、感受性品種那系MS3B由来のtanタンパク質配列番号:3と比較すると、C252YとI268Vの2つのアミノ酸置換が生じており図5、本来のtanタンパク質の機能が抑制されている。この機能の抑制が個体に3デオキシアントシアニジン合成を抑制し、病原性糸状菌に対する抵抗性を付与していると考えられる。現在の技術水準においては、当業者であれば、特定の抵抗性ソルガム品種例えば、GreenleafのtanDNAの塩基配列において、そのコードするタンパク質の3デオキシアントシアニジン合成を抑制する機能、又は病原性糸状菌に対する抵抗性が維持されるような改変を行うことが可能である。また、自然界においても、塩基配列の変異によりコードするタンパク質のアミノ酸配列が変異することは起こり得ることである。従って、本発明は、Greenleafにおけるtanタンパク質のアミノ酸配列配列番号:6において1もしくは複数のアミノ酸が置換、欠失、付加、および/または挿入されたアミノ酸配列からなるタンパク質からなり、植物における3デオキシアントシアニジン合成を抑制するタンパク質をコードするDNA又は植物に病原性糸状菌に対する抵抗性を付与する活性を有するタンパク質をコードするDNAをも含むものである。ここで複数とは、改変後のtanタンパク質が、植物において3デオキシアントシアニジン合成を抑制できる範囲におけるアミノ酸の改変数、又は植物に病原性糸状菌に対する抵抗性を付与する活性を有する範囲におけるアミノ酸の改変数である。ソルガムにおけるtanタンパク質が本来の機能を発揮しなければ、3デオキシアントシアニジンの合成は抑制され、病原性糸状菌に対する抵抗性になると考えられるため、当該アミノ酸改変数は、本質的に制限はない。改変は、例えば、100アミノ酸以内、50アミノ酸以内、30アミノ酸以内例えば、10アミノ酸以内、5アミノ酸以内、3アミノ酸以内、2アミノ酸、1アミノ酸である。さらに、現在の技術水準においては、当業者であれば、特定のソルガム品種からtanDNAが得られた場合、そのDNAの塩基配列情報を利用して、他のソルガム品種や他の植物例えば、イネ、トウモロコシから、合成抑制型又は抵抗性型である相同遺伝子をコードするDNAを取得することができる。従って、本発明は、GreenleafにおけるtanDNA配列番号:4または5とストリンジェントな条件でハイブリダイズするDNAであって、植物における3デオキシアントシアニジン合成を抑制するタンパク質をコードするDNA、又は植物に病原性糸状菌に対する抵抗性を付与する活性を有するタンパク質をコードするDNAが含まれる。ソルガムのtan遺伝子に対応するイネの遺伝子としては、例えば、SALADデータベースにおけるOs04g0630300、Os04g0630400、Os04g0630600、Os04g0630800、Os04g0631000が挙げられ、ソルガムのtan遺伝子に対応するトウモロコシの遺伝子としては、例えば、GenBankACCESSIONNoEU956420、EU966048が挙げられる。こうして得られた変異DNAや相同DNAが、植物における3デオキシアントシアニジン合成を抑制するタンパク質をコードするか否かは、例えば、当該DNAで、病原性糸状菌に対する感受性品種のtan遺伝子を組換え、当該DNAをホモで保持する植物を作出し、病原性糸状菌を噴霧もしくは接種し、その後、感染症状を示すか否か、あるいは感染症状の程度を検定することにより、判定することができる。感染症状としては、例えば、感染部位において、3デオキシアントシアニジンの合成が抑制されることにより、感染部位が黄褐色を呈することが挙げられる図1を参照のこと。または、当該DNAで、病原性糸状菌に対する感受性品種のtan遺伝子を組換え、当該DNAをホモで保持する植物を作出し、該品種の成葉にカッティングもしくはパンチを施し、その後、カッティングもしくはパンチ部位が黄褐色を呈するか否かを検定することにより、判定することができる。また、こうして得られた変異DNAや相同DNAが、植物に病原性糸状菌に対する抵抗性を付与する活性を有するタンパク質をコードするか否かは、例えば、当該DNAで、病原性糸状菌に対する感受性品種のtan遺伝子を組換え、当該DNAをホモで保持する植物を作出し、病原性糸状菌を噴霧もしくは接種し、その後、感染症状を示すか否か、あるいは感染症状の程度を検定することにより、判定することができる。感染症状としては、例えば、病斑の形成が挙げられる。また、非特許文献2に記載されているように、tan形質の品種に紋枯病菌を接種し、その後に発病した個体の割合発病個体率や病班高率を指標に判定することもできる。なお、病班高率RLHは、例えば、個体別に葉鞘高FHと病班高LHとを測定し、RLH=LH/FH×100の式で算出することによって得られる。また、本発明の合成誘導型DNAは、その導入により、植物において3デオキシアントシアニジン合成を誘導することが可能であるという意味において、植物における3デオキシアントシアニジン合成を誘導するための薬剤である。一方、合成抑制型DNAは、その導入により、植物において3デオキシアントシアニジン合成を抑制することが可能であるという意味において、植物における3デオキシアントシアニジン合成を抑制するための薬剤である。さらに、本発明の感受性型DNAは、その導入により、植物に病原性糸状菌に対する感受性を付与することが可能であるという意味において、植物に病原性糸状菌に対する感受性を付与するための薬剤であり、一方、本発明の抵抗性型DNAは、その導入により、植物に病原性糸状菌に対する抵抗性を付与することが可能であるという意味において、植物に病原性糸状菌に対する抵抗性を付与するための薬剤である。なお、上記した変異DNAを作製するための、DNAへの人為的な変異の導入は、例えば、部位特異的変異誘発sitedirectedmutagenesis法KramerWFritzHJMethodsEnzymol1543503671987により行うことができる。また、上記した相同遺伝子を単離するための方法としては、例えば、ハイブリダイゼーション技術SouthernEMJournalofMolecularBiology985031975やポリメラーゼ連鎖反応PCR技術SaikiRKetalScience230135013541985、SaikiRKetalScience2394874911988が挙げられる。相同遺伝子をコードするDNAを単離するためには、通常ストリンジェントな条件下でハイブリダイゼーション反応を行なう。ストリンジェントなハイブリダイゼーション条件としては、6M尿素、04SDS、05xSSCの条件またはこれと同等のストリンジェンシーのハイブリダイゼーション条件を例示できる。よりストリンジェンシーの高い条件、例えば、6M尿素、04SDS、01xSSCの条件を用いれば、より相同性の高いDNAの単離を期待することができる。単離されたDNAは、核酸レベルあるいはアミノ酸配列レベルにおいて、少なくとも50以上、好ましくは70以上、さらに好ましくは90以上例えば、95、96、97、98、99以上の配列の同一性を有する。配列の相同性は、BLASTN核酸レベルやBLASTXアミノ酸レベルのプログラムを利用して決定することができる。該プログラムは、KarlinおよびAltschulによるアルゴリズムBLASTに基づいている。BLASTNによって塩基配列を解析する場合には、パラメーターは例えばscore100、wordlength12とする。また、BLASTXによってアミノ酸配列を解析する場合には、パラメーターは例えばscore50、wordlength3とする。また、GappedBLASTプログラムを用いて、アミノ酸配列を解析する場合は、AltschulらNucleicAcidsRes25338934021997に記載されているように行うことができる。BLASTとGappedBLASTプログラムを用いる場合には、各プログラムのデフォルトパラメーターを用いる。これらの解析方法の具体的な手法は公知である。本発明のtanタンパク質をコードするDNAとしては、その形態に特に制限はなく、cDNAの他、ゲノムDNA、および化学合成DNAが含まれる。ゲノムDNAおよびcDNAの調製は、当業者にとって常套手段を利用して行うことが可能である。ゲノムDNAは、例えば、ソルガムからゲノムDNAを抽出し、ゲノミックライブラリーベクターとしては、プラスミド、ファージ、コスミド、BAC、PACなどが利用できるを作製し、これを展開して、tan遺伝子例えば、配列番号:124または5のいずれかに記載のDNAの塩基配列を基に調製したプローブを用いてコロニーハイブリダイゼーションあるいはプラークハイブリダイゼーションを行うことにより調製することが可能である。また、tan遺伝子に特異的なプライマーを作成し、これを利用したPCRを行うことによって調製することも可能である。また、cDNAは、例えば、ソルガムから抽出したmRNAを基にcDNAを合成し、これをλZAP等のベクターに挿入してcDNAライブラリーを作成し、これを展開して、上記と同様にコロニーハイブリダイゼーションあるいはプラークハイブリダイゼーションを行うことにより、また、PCRを行うことにより調製することが可能である。<感受性型tan遺伝子の発現を抑制するために用いるDNA>また、本発明は、植物の感受性型tan遺伝子感受性型DNA等の発現を抑制するために用いるDNAを提供する。これらのDNAの導入により、植物における3デオキシアントシアニジン合成を抑制し、植物に病原性糸状菌に対する抵抗性を付与することが可能である。この意味において、植物の感受性型tan遺伝子の発現を抑制するために用いるDNAは、植物における3デオキシアントシアニジン合成を抑制するための薬剤であり、植物に病原性糸状菌に対する抵抗性を付与するための薬剤である。ここでtan遺伝子の発現の抑制には、遺伝子の転写の抑制およびタンパク質への翻訳の抑制の双方が含まれる。また、発現の抑制には、発現の完全な停止のみならず発現の減少も含まれる。植物の感受性型tan遺伝子の発現を抑制するために用いるDNAの一つの態様は、上記した本発明の感受性型DNA等の転写産物と相補的なdsRNA二重鎖RNAをコードするDNAである。標的遺伝子配列と同一もしくは類似した配列を有するdsRNAを細胞内に導入することにより、導入した外来遺伝子および標的内因性遺伝子の発現がいずれも抑制される、RNAiRNA干渉、RNAinterferenceと呼ばれる現象を引き起こすことができる。細胞に約40~数百塩基対のdsRNAが導入されると、ヘリカーゼドメインを持つダイサーと呼ばれるRNaseIII様のヌクレアーゼが、ATP存在下で、dsRNAを3末端から約21~23塩基対ずつ切り出し、siRNAshortinterferenceRNAが生じる。このsiRNAに、特異的なタンパク質が結合して、ヌクレアーゼ複合体RISC:RNAinducedsilencingcomplexが形成される。この複合体はsiRNAと同じ配列を認識して結合し、RNaseIII様の酵素活性によってsiRNAの中央部で標的遺伝子の転写産物mRNAを切断する。また、この経路とは別にsiRNAのアンチセンス鎖がmRNAに結合してRNA依存性RNAポリメラーゼのプライマーとして作用し、dsRNAが合成される。このdsRNAが再びダイサーの基質となって、新たなsiRNAを生じて作用を増幅する経路も考えられている。本発明のdsRNAをコードするDNAは、標的遺伝子の転写産物mRNAのいずれかの領域に対するアンチセンスRNAをコードしたアンチセンスDNAと、該mRNAのいずれかの領域のセンスRNAをコードしたセンスDNAを含み、該アンチセンスDNAおよび該センスDNAより、それぞれアンチセンスRNAおよびセンスRNAを発現させることができる。また、これらのアンチセンスRNAおよびセンスRNAよりdsRNAを作成することができる。本発明のdsRNAの発現システムをベクター等に保持させる場合の構成としては、同一のベクターからアンチセンスRNAおよびセンスRNAを発現させる場合と、異なるベクターからそれぞれアンチセンスRNAとセンスRNAを発現させる場合がある。同一のベクターからアンチセンスRNAおよびセンスRNAを発現させる構成としては、例えば、アンチセンスDNAおよびセンスDNAの上流にそれぞれpolIII系のような短いRNAを発現し得るプロモーターを連結させたアンチセンスRNA発現カセットとセンスRNA発現カセットをそれぞれ構築し、これらカセットを同方向にあるいは逆方向にベクターに挿入する構成である。また、異なる鎖上に対向するように、アンチセンスDNAとセンスDNAとを逆向きに配置した発現システムを構成することもできる。この構成では、アンチセンスRNAコード鎖とセンスRNAコード鎖とが対となった一つの二本鎖DNAsiRNAコードDNAが備えられ、その両側にそれぞれの鎖からアンチセンスRNAとセンスRNAとを発現し得るようにプロモーターを対向して備える。この場合には、センスRNAとアンチセンスRNAの下流に余分な配列が付加されることを避けるために、それぞれの鎖アンチセンスRNAコード鎖、センスRNAコード鎖の3末端にターミネーターをそれぞれ備えることが好ましい。このターミネーターは、Aアデニン塩基を4つ以上連続させた配列などを用いることができる。また、このパリンドロームスタイルの発現システムでは、二つのプロモーターの種類は異なっていることが好ましい。また、異なるベクターからアンチセンスRNAおよびセンスRNAを発現させる構成としては、例えば、アンチセンスDNAおよびセンスDNAの上流にそれぞれpolIII系のような短いRNAを発現し得るプロモーターを連結させたアンチセンスRNA発現カセットとセンスRNA発現カセットとをそれぞれ構築し、これらカセットを異なるベクターに保持させる構成である。本発明に用いるdsRNAとしては、siRNAが好ましい。siRNAは、細胞内で毒性を示さない範囲の短鎖からなる二重鎖RNAを意味する。標的tan遺伝子の発現を抑制することができ、かつ、毒性を示さなければ、その鎖長に特に制限はない。dsRNAの鎖長は、例えば、15~49塩基対であり、好適には15~35塩基対でり、さらに好適には21~30塩基対である。本発明のdsRNAをコードするDNAとしては、標的配列のインバーテッドリピートの間に適当な配列イントロン配列が望ましいを挿入し、ヘアピン構造を持つダブルストランドRNAを作るようなコンストラクトSmithNAetalNature4073192000、WesleySVetalPlantJ275812001、PiccinAetalNucleicAcidsRes29E552001を用いることもできる。本発明のdsRNAをコードするDNAは、標的tan遺伝子の塩基配列と完全に同一である必要はないが、少なくとも70以上、好ましくは80以上、さらに好ましくは90以上例えば、95、96、97、98、99以上の配列の同一性を有する。配列の同一性は上述した手法BLASTプログラムにより決定できる。dsRNAにおけるRNA同士が対合した二重鎖RNAの部分は、完全に対合しているものに限らず、ミスマッチ対応する塩基が相補的でない、バルジ一方の鎖に対応する塩基がないなどにより不対合部分が含まれていてもよい。本発明においては、dsRNAにおけるRNA同士が対合する二重鎖RNA領域中に、バルジおよびミスマッチの両方が含まれていてもよい。植物の感受性型tan遺伝子の発現を抑制するために用いるDNAの他の態様は、上記した本発明の感受性型DNAの転写産物と相補的なアンチセンスRNAをコードするDNAアンチセンスDNAである。アンチセンスDNAが標的遺伝子の発現を抑制する作用としては、三重鎖形成による転写開始阻害、RNAポリメラーゼによって局部的に開状ループ構造がつくられた部位とのハイブリッド形成による転写抑制、合成の進みつつあるRNAとのハイブリッド形成による転写阻害、イントロンとエキソンとの接合点でのハイブリッド形成によるスプライシング抑制、スプライソソーム形成部位とのハイブリッド形成によるスプライシング抑制、mRNAとのハイブリッド形成による核から細胞質への移行抑制、キャッピング部位やポリ付加部位とのハイブリッド形成によるスプライシング抑制、翻訳開始因子結合部位とのハイブリッド形成による翻訳開始抑制、開始コドン近傍のリボソーム結合部位とのハイブリッド形成による翻訳抑制、mRNAの翻訳領域やポリソーム結合部位とのハイブリッド形成によるペプチド鎖の伸長阻止、および核酸とタンパク質との相互作用部位とのハイブリッド形成による遺伝子発現抑制などが挙げられる。これらは、転写、スプライシング、または翻訳の過程を阻害して、標的遺伝子の発現を抑制する。本発明で用いられるアンチセンスDNAは、上記のいずれの作用で標的tan遺伝子の発現を抑制してもよい。一つの態様としては、標的遺伝子のmRNAの5端近傍の非翻訳領域に相補的なアンチセンス配列を設計すれば、遺伝子の翻訳阻害に効果的であろう。しかし、コード領域もしくは3側の非翻訳領域に相補的な配列も使用し得る。このように、遺伝子の翻訳領域だけでなく非翻訳領域の配列のアンチセンス配列を含むDNAも、本発明で利用されるアンチセンスDNAに含まれる。使用されるアンチセンスDNAは、適当なプロモーターの下流に連結され、好ましくは3側に転写終結シグナルを含む配列が連結される。アンチセンスDNAは、本発明の感受性型DNA例えば、配列番号:1に記載の塩基配列からなるDNAの配列情報を基にホスホロチオネート法SteinNucleicAcidsRes16320932211988などにより調製することが可能である。調製されたDNAは、後述する公知の方法で、植物へ導入できる。アンチセンスDNAの配列は、植物が持つ内因性の感受性tan遺伝子の転写産物と相補的な配列であることが好ましいが、遺伝子の発現を有効に阻害できる限り、完全に相補的でなくてもよい。転写されたRNAは、標的とする遺伝子の転写産物に対して好ましくは90以上例えば、95、96、97、98、99以上の相補性を有する。効果的に標的遺伝子の発現を阻害するには、アンチセンスDNAの長さは、少なくとも15塩基以上であり、好ましくは100塩基以上であり、さらに好ましくは500塩基以上である。通常、用いられるアンチセンスDNAの長さは5kbよりも短く、好ましくは25kbよりも短い。植物の感受性型tan遺伝子の発現を抑制するために用いるDNAの他の態様は、本発明の感受性型DNA等の転写産物を特異的に開裂するリボザイム活性を有するRNAをコードするDNAである。リボザイムには、グループIイントロン型や、RNasePに含まれるM1RNAのように400ヌクレオチド以上の大きさのものもあるが、ハンマーヘッド型やヘアピン型と呼ばれる40ヌクレオチド程度の活性ドメインを有するものもある。例えば、ハンマーヘッド型リボザイムの自己切断ドメインは、G13U14C15のC15の3側を切断するが、活性にはU14が9位のAと塩基対を形成することが重要とされ、15位の塩基はCの他にAまたはUでも切断されることが示されている。リボザイムの基質結合部を標的部位近傍のRNA配列と相補的になるように設計すれば、標的RNA中のUC、UUまたはUAという配列を認識する制限酵素的なRNA切断リボザイムを作出することが可能である。また、ヘアピン型リボザイムも、本発明の目的のために有用である。ヘアピン型リボザイムは、例えばタバコリングスポットウイルスのサテライトRNAのマイナス鎖に見出される。このリボザイムも、標的特異的なRNA切断を起こすように設計できることが示されている。標的を切断できるよう設計されたリボザイムは、植物細胞中で転写されるようにカリフラワーモザイクウイルスの35Sプロモーターなどのプロモーターおよび転写終結配列に連結される。このような構成単位をタンデムに並べ、標的遺伝子内の複数の部位を切断できるようにして、より効果を高めることもできる。このようなリボザイムを用いて標的となるtan遺伝子の転写産物を特異的に切断し、該遺伝子の発現を抑制することができる。<ベクター、形質転換植物細胞、形質転換植物体>本発明は、また、上記本発明のDNA合成誘導型DNA、合成抑制型DNA、感受性型DNA、抵抗性型DNA、感受性型tan遺伝子の発現を抑制するためのDNAを含むベクター、上記本発明のDNAまたはそれを含むベクターが導入された植物細胞例えば、ソルガム細胞、イネ細胞、トウモロコシ細胞、該植物細胞を含む植物体例えば、ソルガム、イネ、トウモロコシ、該植物体の子孫またはクローンである植物体、および、これら植物体の繁殖材料を提供する。本発明のベクターとしては、例えば、自律複製可能なベクターまたは染色体中に相同組換え可能なベクターを使用することができる。本発明のベクターは、植物細胞に導入した後、本発明のDNAが発現するように、通常、適当な発現プロモーターを含む。本発明に用いるプロモーターとして、例えば、カリフラワーモザイクウイルス由来の35Sプロモーター、トウモロコシ由来のユビキチンプロモーターを挙げることができる。ベクターは、選択マーカー、複製開始点、ターミネーター、ポリリンカー、エンハンサー、リボゾーム結合部位などを適宜含むことができる。一般に、該プロモーターの下流に、本発明のDNAが位置し、さらに該DNAの下流にはターミネーターが位置する。ターミネーターとしては、例えば、カリフラワーモザイクウイルス由来のターミネーターやノパリン合成酵素遺伝子由来のターミネーターを挙げることができる。上記ベクターを導入する植物細胞の形態としては、特に制限はなく、懸濁培養細胞、プロトプラスト、葉の切片、カルス、未熟胚、花粉などを例示することができる。上記ベクターを植物細胞中に導入し、植物体を再生させる方法としては、当該技術分野における常法を用いることができる。ソルガムにおいては、例えば、アグロバクテリウム法やパーティクルガン法により、未熟胚やカルスに遺伝子導入して植物体を再生させる方法、超音波によって遺伝子導入した花粉を用いて受粉する方法が好適に用いられるJAAbleetalInVitroCellDevBiol373413482001、AMCasasetalProcNatlAcadSciUSA9011212112161993、VGirijashankaretalPlantCellRep245135222005、JMJEOUNGetalHereditas13720282002、VGirijashankaretalPlantCellRep245135222005、ZuoyuZhaoetalPlantMolecularBiology447897982000、SGureletalPlantCellRep284294442009、ZYZhaoMethodsMolBiol3432332442006、AKShrawatandHLorzPlantBiotechnolJ45756032006、DSyamalaandPDeviIndianJExpBiol41148214862003、ZGaoetalPlantBiotechnolJ35915992005。イネにおいては、例えば、ポリエチレングリコールによりプロトプラストへ遺伝子導入し、植物体を再生させる方法Datta,S.K.InGeneTransferToPlantsPotrykusIandSpangenbergEds.pp66-74,1995、電気パルスによりプロトプラストへ遺伝子導入し、植物体を再生させる方法Tokietal.PlantPhysiol.100,1503-1507,1992、パーティクルガン法により細胞へ遺伝子を直接導入し、植物体を再生させる方法Christouetal.Bio/technology,9:957-962,1991およびアグロバクテリウムを介して遺伝子を導入し、植物体を再生させる方法Hieietal.PlantJ.6:271-282,1994など、いくつかの技術が既に確立し、本願発明の技術分野において広く用いられている。トウモロコシにおいては、例えば、ShillitoらBioTechnology75811989に記載された方法やGordenKammらPlantCell26031990に記載された方法が挙げられる。上記本発明のDNAは、外因性のDNAとして植物に導入することができるが、本発明のDNAを有する品種との交配によって植物に導入することもできる。本発明における導入には、これら双方の形態が含まれる。一旦、染色体内に上記本発明のDNAが導入された植物体が得られれば、該植物体から有性生殖または無性生殖により子孫を得ることが可能である。また、該植物体やその子孫あるいはクローンから繁殖材料例えば、カルス、プロトプラスト、花粉、種子、切穂等を得て、それらを基に該植物体を量産することも可能である。本発明には、上記本発明のDNAが導入された植物細胞、該細胞を含む植物体、該植物体の子孫およびクローン、ならびに該植物体、その子孫およびクローンの繁殖材料が含まれる。本発明の感受性型DNAが導入された植物体は、例えば、植物に病原性糸状菌に対する抵抗性を付与するための薬剤の開発スクリーニングや病原性糸状菌に対する感受性発症の機構の解明のための実験用植物として利用することができる。一方、本発明の抵抗性型DNAまたは本発明の感受性型tan遺伝子の発現を抑制するためのDNAが導入された植物体は、これらDNAが導入されていない感受性の植物体と比較して、その収量の増大が期待でき、より有用性の高い農作物あるいはバイオマスとして利用することができる。<病原性糸状菌に対する抵抗性が付与された植物の作出方法>本発明は、また、植物において、本発明の感受性型DNA感受性型tan遺伝子の発現または機能を抑制することを特徴とする、病原性糸状菌に対する抵抗性が付与された植物の作出方法を提供する。本発明において、植物に病原性糸状菌に対する抵抗性を付与するとは、病原性糸状菌に対する抵抗性を全く有しない品種に病原性糸状菌に対する抵抗性を持たせることのみならず、既に、一定の病原性糸状菌に対する抵抗性を有している品種における、病原性糸状菌に対する抵抗性を、さらに増大させることをも含む意である。植物における本発明の感受性型DNAの発現または機能を抑制するための一つの態様は、植物に、上記本発明の抵抗性型DNAを導入することである。植物における病原性糸状菌に対する抵抗性は、単一劣性遺伝子支配であるため、植物に病原性糸状菌に対する抵抗性の形質を付与するためには、通常、個体におけるtan対立遺伝子の双方を抵抗性型DNAにする必要がある。これにより個体中で抵抗性型DNAのみが発現し、植物に病原性糸状菌に対する抵抗性を付与することができる。植物染色体への本発明の抵抗性型DNAの導入は、例えば、交配や相同組換えにより行うことができる。抵抗性型DNAを導入することに代えて、植物染色体上の感受性型DNAに、特定のDNA配列を導入し、その機能を破壊してもよい。植物における本発明の感受性型DNAの発現または機能を抑制するための他の一つの態様は、植物に上記本発明のtan遺伝子の発現を抑制するためのDNAを導入することである。これにより個体中の感受性型DNAから、感受性型の翻訳産物が生産されなくなるため、植物に病原性糸状菌に対する抵抗性を付与することができる。植物における本発明の感受性型DNAの発現または機能を抑制するための他の態様としては、例えば、感受性型DNAの発現を抑制する薬剤や感受性型の翻訳産物に結合し、その機能を抑制する薬剤の利用も考えられる。<植物における病原性糸状菌に対する感受性または抵抗性を判定する方法>本発明は、また、植物における病原性糸状菌に対する感受性または抵抗性を判定する方法を提供する。本発明の判定方法の一つの態様は、植物におけるtan遺伝子の塩基配列を解析し、対照の塩基配列と比較することを特徴とする方法である。tan遺伝子の塩基配列の解析に際しては、tan遺伝子をPCRにより増幅した増幅産物を用いることができる。前記PCRを実施する場合において、用いられるプライマーは、tan遺伝子を特異的に増幅できるものである限り制限はなく、tan遺伝子の配列情報例えば、配列番号:124または5に基づいて適宜設計することができる。好適なプライマーとしては、後述の表2に記載の、配列番号:17、18、25または26に記載の塩基配列からなるプライマーが挙げられる。これらプライマーを適宜組み合わせて、tan遺伝子の特定の塩基配列を増幅することができる。被検植物におけるtan遺伝子の塩基配列と比較する対照の塩基配列は、典型的には、感受性型品種または抵抗性型品種におけるtan遺伝子の塩基配列である。決定したtan遺伝子の塩基配列と感受性型品種における塩基配列例えば、配列番号:12または抵抗性型品種における塩基配列例えば、配列番号:45とを比較することにより、被検植物におけるtan遺伝子が、抵抗性型であるか感受性型であるかを評価することができる。例えば、感受性型品種における塩基配列例えば、配列番号:12と比較して、蛋白質の機能を消失させる変異例えば、ソルガムにおいては、C252Y、I268Vが存在する場合、被検植物におけるtan遺伝子は抵抗性型である蓋然性が高いと判定される。被検植物におけるtan遺伝子の塩基配列が、対照の塩基配列と相違するか否かは、上記した直接的な塩基配列の決定以外に、種々の方法により間接的に解析することができる。このような方法としては、例えば、PCRSSCP法、制限酵素断片長多型RestrictionFragmentLengthPolymorphism/RFLPを利用したRFLP法やPCRRFLP法、変性剤濃度勾配ゲル電気泳動法denaturantgradientgelelectrophoresis:DGGE、アレル特異的オリゴヌクレオチドAlleleSpecificOligonucleotide/ASOハイブリダイゼーション法、リボヌクレアーゼAミスマッチ切断法が挙げられる。なお、本発明の判定方法における、被検植物からのDNAの調製は、常法、例えば、CTAB法を用いて行うことができる。DNAを調製するための植物としては、成長した植物体のみならず、植物の種子や幼植物体を用いることもできる。また、塩基配列の決定は、常法、例えば、ジデオキシ法やマキサムギルバート法などにより行なうことができる。塩基配列の決定においては、市販のシークエンスキットおよびシークエンサーを利用することができる。本発明の判定方法の他の一つの態様は、植物におけるtan遺伝子の発現または発現産物の分子量を検出することを特徴とする方法である。ここで遺伝子の発現の検出には、転写レベルにおける検出および翻訳レベルにおける検出の双方を含む意である。また、発現の検出には、発現の有無の検出のみならず、発現の程度の検出も含む意である。転写レベルにおける検出は、常法、例えば、RTPCRReversetranscribedPolymerasechainreaction法やノーザンブロッティング法により実施することができる。前記PCRを実施する場合において用いられるプライマーは、tan遺伝子を特異的に増幅できるものである限り制限はなく、tan遺伝子の配列情報例えば、配列番号:124または5に基づいて適宜設計することができる。プライマーの好適な例は、上記表2に記載の、配列番号:17に記載の塩基配列からなるプライマーと配列番号:18に記載の塩基配列からなるプライマーとの組み合わせである。一方、翻訳レベルにおける検出は、常法、例えば、ウェスタンブロッティング法により、実施することができる。ウェスタンブロッティングに用いる抗体は、ポリクローナル抗体でもモノクローナル抗体でもよく、これら抗体の調製方法は、当業者に周知である。遺伝子発現の検出の結果、被検体において、感受性型tan遺伝子の発現量が感受性品種例えば、ソルガムにおいては那系MS3Bの発現量よりも有意に低ければ、また、感受性型tan遺伝子の発現産物の分子量が感受性品種例えば、ソルガムにおいては那系MS3Bにおける分子量と有意に異なれば、感受性型tan遺伝子の機能の発現が抑制されると考えられる。従って、この場合には、被検植物が病原性糸状菌に対する抵抗性を有する蓋然性が高いと判定される。本発明の判定方法の他の一つの態様は、被検植物における、tan遺伝子と連鎖する分子マーカーの塩基配列を解析し、対照の塩基配列と比較することを特徴とする方法である。ここで分子マーカーとは、tan遺伝子と遺伝的に連鎖するDNA領域であって、他のDNA領域と識別可能なDNA領域をいう。分子マーカーは、tan遺伝子の近傍に位置する程、tan遺伝子と同時に遺伝しやすいため、本発明の判定方法において有用性が高い。有用性の高い本発明の分子マーカーは、通常、tan遺伝子のコード領域の両末端塩基から50kbp以内に存在するものであり、より好ましくは20kbp以内、さらに好ましくは10kbp以内に存在するものである。本発明の分子マーカーの好ましい態様は、挿入欠失マーカー、SSR単純反復配列マーカー、CAPS増幅切断多型マーカーおよびSNP一塩基多型マーカーである。挿入欠失マーカーは、塩基の挿入および/または欠失によって生じるDNA多型である。SSRマーカーは、2あるいは3塩基の単位例えば、CA、CG、TA、TC、AGG、CTT、CGC、GAGなどが、数回から数百回反復する繰り返し配列である。この繰り返しの数が個体または系統によって異なっているため、この繰り返し数の違いはDNA多型として利用することができる。CAPSマーカーは、制限酵素の認識配列において、塩基の挿入、欠失、置換等によって生じるDNA多型である。SNPマーカーは、DNAの塩基配列中の塩基1個の置換によって生ずるDNA多型である。分子マーカーとなる塩基配列は、当業者であれば、例えば、品種間におけるtan遺伝子の塩基配列の比較を基に、適宜抽出することが可能である。挿入欠失マーカーにおける塩基配列の解析は、直接的な塩基配列の決定を行う方法以外に、当該マーカー領域を含む塩基配列をプライマーを利用したPCRを行い、得られた増幅産物を電気泳動し、ゲル上におけるDNAバンドの位置の違いとして検出する方法で実施することができる。また、SSRマーカーにおける塩基配列の解析は、直接的な塩基配列の決定を行って、繰り返し配列の違いとして検出する方法以外に、当該繰り返し部分を含む塩基配列を増幅しうるプライマーを利用したPCRを行い、得られた増幅産物を電気泳動し、ゲル上におけるDNAバンドの位置の違いとして検出する方法で実施することができる。SNPマーカーにおける塩基配列の解析は、例えば、一塩基多型部分を含む塩基配列を増幅しうるプライマーを利用したPCRを行い、得られた増幅産物中の一塩基多型部分に取り込まれた塩基の種類を偏光蛍光分析器で特定する方法で実施することができる。対照の塩基配列としては、tan遺伝子と連鎖する公知の分子マーカーの塩基配列を利用することができる。例えば、後述の表1に示す、配列番号:7に記載の塩基配列からなるプライマー及び配列番号:8に記載の塩基配列からなるプライマーによって増幅されるソルガム6番染色体由来の領域に座乗しているSSRマーカーSB25792、配列番号:9に記載の塩基配列からなるプライマー及び配列番号:10に記載の塩基配列からなるプライマーによって増幅されるソルガム6番染色体由来の領域に座乗しているCAPSマーカー、配列番号:11に記載の塩基配列からなるプライマー及び配列番号:12に記載の塩基配列からなるプライマーによって増幅されるソルガム6番染色体由来の領域に座乗しているSNPマーカーが挙げられる。従って、配列番号:7に記載の塩基配列からなるプライマー及び配列番号:8に記載の塩基配列からなるプライマーで増幅されるSSRマーカーは、増幅されたDNA断片の配列または鎖長により、感受性型であるか抵抗性型であるかを判別することができる。また、配列番号:9に記載の塩基配列からなるプライマー及び配列番号:10に記載の塩基配列からなるプライマーで増幅されるCAPSマーカーは、増幅されたDNA断片が制限酵素DraIによって切断された場合には感受性型であり、増幅されたDNA断片が制限酵素DraIによって切断されない場合には抵抗性型であると判断することができる。さらに、配列番号:11に記載の塩基配列からなるプライマー及び配列番号:12に記載の塩基配列からなるプライマーで増幅されるSNPマーカーは、増幅されたDNA断片の塩基配列を解読することにより、後述の実施例に示す通り、感受性型であるか抵抗性型であるかを判別することができる。上記した通り、被検植物における分子マーカーの塩基配列と対照の塩基配列との比較は、直接的な塩基配列の比較以外に、塩基配列の違いを評価しうる他の指標例えば、上記したPCRによる増幅産物の分子量などの比較によって、実施することができる。比較の結果、被検植物における分子マーカーの塩基配列が、感受性型分子マーカーと同じ型である場合、被検植物は感受性の蓋然性が高いと判定され、抵抗性型分子マーカーと同じ型である場合、被検植物は抵抗性の蓋然性が高いと判定される。<病原性糸状菌に対する抵抗性の植物を育種する方法>本発明は、また、病原性糸状菌に対する抵抗性の植物を育種する方法を提供する。本発明の育種方法は、a病原性糸状菌に対する抵抗性の植物品種と任意の植物品種とを交配させる工程、b交配により得られた個体における病原性糸状菌に対する感受性または抵抗性を、上記本発明の判定方法により判定する工程、およびc病原性糸状菌に対する抵抗性を有すると判定された品種を選抜する工程、を含む。病原性糸状菌に対する抵抗性の植物品種と交配させる任意の植物品種としては、例えば、感受性品種、感受性品種と抵抗性品種との交配により得られた個体が挙げられるが、これらに制限されない。本発明の育種方法を利用すれば、病原性糸状菌に対する抵抗性の植物を、種子や幼植物の段階で選抜することが可能となり、病原性糸状菌に対する抵抗性の形質を有する品種の育成を、従来よりも短期間で行うことが可能となる。従って、本発明は、病原性糸状菌に対する抵抗性の植物を育種するための前記方法によって育種された植物体例えば、ソルガム、イネ、トウモロコシ、該植物体の子孫又はクローンである植物体、及びこれら植物体の繁殖材料例えば、カルス、プロトプラスト、花粉、種子、切穂等をも提供する。以下、実施例に基づいて本発明をより具体的に説明するが、本発明は以下の実施例に限定されるものではない。また、下記実施例は以下の通りに実験、解析を行った。実施例1<ソルガムのtan遺伝子の存在領域の絞り込み>ソルガムで病障害により紫色を示す品種那系MS3Bとtan形質の品種Greenleafとの大規模な交配集団F3F5において、ソルガムのSSRマーカーおよび挿入欠失マーカーを利用して、tan遺伝子のマッピングを行った図1、図2、図3。なお、マッピングに用いた実験方法等については下記の通りである。tan形質の検定tan形質の検定は、温室内ではパンチによる葉色の変化により行った。また、圃場で前記品種のソルガムを栽培することによって自然発生的に発生する病斑や障害、虫害による葉色の変化により検定を行った。また、那系MS3Bは種子の穎の色が濃紫色であり、Greenleafは赤褐色であることから、この点も指標としてtan形質の検定を行った。PCRソルガムの葉からのDNAの抽出は一般的なcTAB法や破砕による抽出法を用いた。また、多型マーカーを含む塩基配列を増幅するためのPCRにおいては、PCR試薬GoTaq登録商標GreenMasterMixを5μl、蒸留水を44μl、DNAを01μl、プライマーを05μl含む、計10μlの反応液を調製した。そして、1反応当たり、そのうち95μlを使用し、94度で2分、94度で1分→55°Cで1分→72度で2分を35サイクル、72度で10分の条件でPCR反応を行った。また、後述のマッピングに用いたCAPSマーカー及びSNPマーカーを解析するためのプライマーの情報を表1に示す。なお、表1に記載のSB25792は解析対象のSSRマーカーの名称であり、Sb06g0295101及びSb06g0295301は解析対象のCAPSマーカー及びSNPマーカーが各々座乗している遺伝子の名称である。各マーカーによる解析後述のラフマッピングには、YonemaruJ,ら、DNARes、2009年、16巻、187~193ページの記載のSSRマーカーを用いた。また、前述の通り、表1に示したプライマーを用いて、CAPSマーカー及びSNPマーカーの解析を行った。すなわち、CAPSマーカーによる解析においては、前記PCR反応にて増幅した産物5ulを制限酵素DraIで処理し、3アガロースゲルにて電気泳動を行った。そして、那系MS3Bゲノム由来の増幅産物はDraIで消化されるため、バンドサイズから多型を判別した。また、SNPマーカーによる解析に関して、前記PCR反応にて増幅した産物をダイレクトシーケンスに供し、その塩基配列を解読した。結果、解読した塩基配列において、那系MS3BではいずれもTチミンであり、GreenleafにおいてはCシトシンとGグアニンとなっている、2ヶ所のSNPがあることを見出し、これらのSNPを指標として、後述のマッピングを行った。先ず、F5のRIL個体143個体について、SSRマーカーを用いたラフマッピングを行い、tan遺伝子が染色体6番に座乗していることを解明した。次いで、F3部分へテロ集団個体1142個体について、SSRマーカーSB3751からSB3764の間で組換えのある個体63個体を選抜し、圃場にてtan形質の検定調査を行い、tan遺伝子の存在領域を、約150kbpの領域に絞り込んだ。さらに、ソルガム品種BTx623の塩基配列情報に基づいて見出したCAPSマーカー、SNPマーカーを用いたマッピングを行い、tan遺伝子の存在領域を最終的に約29kbpの領域に絞り込んだ。実施例2<Greenleaf及び那系MS3B間のtan遺伝子の比較>次に、本発明者らは、前記絞り込んだ領域における遺伝子のアノテーションをデーターベースで調査したところ、この領域はトウモロコシのロイコアントシアニジンレダクターゼに相同性を持つ遺伝子がクラスターを作っていることが判明した。すなわち、この絞り込んだ領域内にはトウモロコシのロイコアントシアニジンレダクターゼに相同性を持つ4つの候補遺伝子が存在していた。そして、この4つの遺伝子の発現をRTPCRにて調査したところ、候補遺伝子のうち、特定の候補遺伝子以下、tan遺伝子と称するの発現パターンのみが、ソルガムが病障害により紫色を呈するときに遺伝子の発現が増加することを見出した図4。なお、残りの遺伝子の発現はRTPCRでは確認されなかった。このことから、この遺伝子が着色の原因遺伝子であると推測された。なお、RTPCRは、KikuchiR.ら、PlantPhysiol、2009年、149巻、1341~1353ページ、及びShimadaS.ら、PlantJ.、2009年、58巻、668~681ページの記載に沿って行った。また、RTPCRに用いたプライマー配列番号:13~24に記載の塩基配列からなるプライマーの配列は表2に示す。さらに、tan遺伝子周辺の塩基配列を決定し、そのコードするアミノ酸配列を品種間で比較したところ、紫色を呈する品種の那系MS3Bは、タンパク質をコードする遺伝子領域のゲノム塩基配列が既に分かっている品種、BTx623と完全に一致していた図5。一方、Greenleafにおいては、那系MS3Bと異なるアミノ酸配列が該領域内に2箇所あることが見出された。そして、これらの結果から、tan形質のGreenleafでは、tan遺伝子がコードするタンパク質、すなわち正常な機能を有するロイコアントシアニジンレダクターゼ様タンパク質が合成されていないことが推測された図5。なお、前記塩基配列及びアミノ酸配列のアライメント及び比較は、ソフトウェアGENETYX、CrastalWhttpclustalwddbjnigacjptopjhtmlを用いて行った。実施例3<Greenleaf及び那系MS3Bの葉におけるアントシアニンの生成誘導についての分析>那系MS3B及びGreenleafの葉を5mm幅に細断し、水寒天の上で26°Cでインキュベートした。そして、インキュベート開始時、インキュベート開始してから2日目、4日目、6日目に前記葉を各々回収した。次いで、得られた葉生重量001gから、1mlのメタノールにて4°Cで24時間かけて抽出液を得た。そして、該抽出液の吸光度波長493nmを測定した。得られた結果を図6に示す。図6に示した結果から明らかなように、那系MS3Bの葉においては細断を受け、アントシアニンの生成が誘導されているのに対し、Greenleafの葉においては誘導されていなかった。実施例4<Greenleaf、那系MS3B及びBTx623の葉における、3デオキシアントシアニジン生成についての分析>病斑を示したBTx623、那系MS3B及びGreenleafの葉1gから各々001塩酸メタノールにて色素を抽出した。得られた色素を2N塩酸にて100°C、1時間かけ、加水分解した後、酢酸エチルにて脂質を除去し、イソアミルアルコールで色素を抽出した。抽出した色素を風乾させた後、メタノールに溶解して、TLCシートにスポッティングした。なお、薄層クラマトグラフィーTLCの展開は、酢酸水塩酸溶媒を用いて行った。また、TLCシートはMerck社製、TLCcelluloseFを用い、アントシアニンアピゲニニジン、ルテオリニジンの標準品は、Fluka社製のものを用いた。得られた結果を図7に示す。図7に示した結果から明らかなように、病斑を示した那系MS3Bの葉ではアピゲニニジン、ルテオリニジンの両方が生成しているが、Greenleafの葉ではいずれの色素も生成されていなかった。しかしながら、図には示さないが、Greenleafの葉の抽出物を展開したTLCのレーンにUVを当てることにより、スポットが観察された。このことから、Greenleafにおいても、可視光では存在を確認できないが、アントシアニンと挙動を共にしうる色素であるフラボノイド等が生成されていることが推測された。実施例5<外的障害を受けたGreenleafの葉に蓄積される色素の同定>実施例4において示唆された、外的障害を受けたGreenleafの葉において生成される色素の同定を試みた。すなわち、前記同様に、カットしたGreenleafの葉を水寒天の上でインキュベートした。そして、3日間のインキュベーションにおいて誘導された色素をメタノールで抽出し、HPLCMSを用いて分析した。得られた結果を図8に示す。なお、HPLCの条件は、移動相の濃度3酢酸:メタノールを70:30から50:50に20分かけてグラジエントに変化させた後、10分間維持した。また、分析には、カラムはコスモシール5C18ARIIナカライテスク株式会社製を用いた。さらに、MSの検出はAPIESpositiveモードにて行った。また、標準品は、CAYMANCHEMICAL社製の標品を用いた。図8に示す通り、カットしてインキュベーションしたGreenleafの葉からの抽出液においては、約182分にピークが見られ、このピークは、標準品との比較及びMS分析の結果から、ルテオリン由来のものであることが明らかとなった。なお、MS分析によって得られたその他のピークについては不明である。また、非特許文献4において、tan形質を示すソルガムではアピゲニンが蓄積していると記載されていたが、今回の分析では確認されなかった。また、図には示さないが、ソルガムのアントシアニン合成経路図9参照において、各反応段階において作用する酵素をコードする遺伝子の発現をRTPCRにて検出したところ、那系MS3B及びGreenleaf共に、各段階の反応を触媒する酵素をコードする遺伝子はいずれも発現していることが明らかとなった。これらの結果から、那系MS3Bにおいては、アントシアニン合成の最終段階である3デオキシアントシアニジンレダクターゼ3DANSは正常な活性を保持しているため、アピゲニニジン及びルテオニジンが合成され、葉の外的障害を受けた部位は紫色等に着色される。一方、Greenleafでは3DANSが機能していないため、この最終反応が起きないと考えられ、その代わりにFNSII酵素の作用でルテオリンが蓄積することが推測される。さらに、外的障害を受けたGreenleafの葉においては、前述の通り、3デオキシアントシアニジンの代わりに少なくともルテオリンが蓄積していることが明らかになった。また、ルテオリンは抗酸化活性や抗菌活性を有していることから、tan形質を示すソルガムの葉においては、この色素が蓄積することにより、病原性糸状菌等に対する抵抗性が発揮されていると推測される。実施例6<tan形質と病原性糸状菌等に対する抵抗性との相関についての検証>前述の通り、変異型のtan遺伝子を有するtan形質と病原性糸状菌等に対する抵抗性との相関を確認するため、QTL解析を行った。すなわち、那系MS3BとGreenleafとを交配して得られたF5のRILのうち、染色体6番が部分ヘテロとなっているRIL112を選択し、各々の植物個体から前記同様、DNAを抽出し、SSRマーカーを用いてこの領域のタイピングを行った。また、すす紋病については2010年に、信州大学伊那キャンパス圃場にて、2番草に発病するすす紋病の罹病程度を観察した。その結果、図には示さないが、tan形質を持つ個体では明らかにすす紋病に対して抵抗性を示すことが確認された。これらの結果から、図10に示す通り、すす紋病に抵抗性を示す遺伝子領域を示すQTLの領域は2MBにまで絞り込まれ、この領域はtan遺伝子または、その遺伝子座が含まれていることから、tan形質がすす紋病等の抵抗性を高める可能性があることが強く示唆された。以上の結果から、tan形質を示すソルガムにおいては、tan遺伝子が変異しているため、この遺伝子がコードするロイコアントシアニジンレダクターゼ様タンパク質、すなわち3デオキシアントシアニジンレダクターゼ3DANSの機能が不活化している。そのため、外的障害を受けた部位においては、3デオキシアントシアニジンアピゲニニジン及びルテオニジンが合成されず、代わりに抗菌活性等を有しているルテオリン等が蓄積されることにより、tan形質において、病原性糸状菌に対する抵抗性が発揮されていることが明らかになった。"