"配列番号1から5、7から12、14及び16から30に示される塩基配列を有するIgA腎症関連遺伝子のDNA。請求項1記載の塩基配列を有するDNAと相補的な塩基配列からなるDNAとストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、かつIgA腎症関連遺伝子のmRNAを検出することができる機能を有するDNA。請求項1または2記載のDNAの塩基配列および/または該DNAと相補的な塩基配列のうちの少なくとも21塩基を含むオリゴヌクレオチド。請求項3記載のオリゴヌクレオチドを用いてIgA腎症関連遺伝子のmRNAを検出する方法。請求項3記載のオリゴヌクレオチドを含む、IgA腎症診断薬。請求項3記載のオリゴヌクレオチドを用いて、IgA腎症関連遺伝子の転写および該mRNAの翻訳を抑制する方法。IgA腎症患者白血球より、ディファレンシャルディスプレイ法を用いた、請求項1記載のDNAを含むIgA腎症関連遺伝子の取得方法。IgA腎症の疾患原因の解明、治療あるいは患者の負担を軽減した診断が望まれている。本発明は、IgA腎症に関与する新規DNAおよびその取得方法を提供すること、また、IgA腎症に関与する新規蛋白質および該蛋白質に対する抗体、該蛋白質をコードするDNA、ならびにそれらを用いた治療薬および診断薬を提供することにある。本発明は、配列番号1から31に記載の塩基配列を有するIgA腎症関連遺伝子のDNA、該DNAとストリンジェントな条件下でハイブリダイズするDNAに関する。本発明のDNAおよび該DNAと相補的な塩基配列の部分断片に基づくオリゴヌクレオチドを用いてIgΛ腎症関連遺伝子のmRNAを検出する方法、それらのオリゴヌクレオチドを含む、IgA腎症診断薬に関する。本発明のDNAおよび該DNAと相補的な塩基配列の部分断片に基づくオリゴヌクレオチドを用いて、IgA腎症関連遺伝子の転写および該mRNAの翻訳を抑制する方法、それらのオリゴヌクレオチドを含む、IgA腎症治療薬に関する。また本発明は、IgA腎症患者白血球より、ディファレンシャルディスプレイ法を用いたIgA腎症関連遺伝子の取得方法に関する。また、本発明は、配列番号32に記載のアミノ酸配列を有する蛋白質、ならびに本発明の蛋白質をコードするDNA、配列番号1記載の塩基配列を有するDNA、またはこれらの塩基配列を有するDNAとストリンジェントな条件下でハイブリダイズするDNAに関する。また本発明は、該DNAとベクターとからなる組み換えベクター、該組み換えベクターを宿主細胞に導入して得られる形質転換体、および該形質転換体を培地に培養し、培養物中に本発明の蛋白質を生成蓄積させ、該培養物から蛋白質を採取することを特徴とする製造方法に関する。また、本発明の蛋白質に特異的に反応する抗体、該抗体を用いて該蛋白質を免疫学的に認識する方法、該抗体を含むIgA腎症診断薬ならびに該抗体を含むIgA腎症治療薬に関する。本発明では、新規遺伝子を取得するために、IgA腎症患者および健常人の白血球におけるmRNAの発現量の差異に注目したディファレンシャルディスプレイ法[FEBSレターズFEBSLetters351,231]を用いている。ディファレンシャルディスプレイ法とは、発現様式を指標に新規遺伝子をクローニングする方法である。すなわち、細胞から抽出した全RNAあるいはmRNAに対し、各種プライマーを用いてポリメラーゼチェインリアクションPCR反応を行い、健常人の白血球に比べIgA腎症患者の白血球で、その発現量が顕著に増加あるいは減少する新規な遺伝子のcDNA増幅断片を取得する方法である。以下にその方法について述べる。IgA腎症患者および健常人の白血球から全RNAを調製する方法としては、チオシアン酸グアニジン-トリフルオロ酢酸セシウム法[MethodsinEnzymol1543]、AGPC法実験医学9,1937,またはRNA回収用キットRNAeasyQIAGEN社などがあげられる。また全RNAからポリARNAを調製する方法としては、オリゴdT固定化セルロースカラム法[モレキュラークロ-ニング:アラボラトリーマニュアル第2版]などがあげられる。また、IgA腎症患者の白血球および健常人の白血球からmRNAを調製するキットとしては、ファーストトラックmRNAアイソレーションキットFastTrackmRNAIsolationKitインビトロジェン社製、クイックプレップmRNAピュリフィケーションキットQuickPrepmRNAPurificationKit;ファルマシア社製などがあげられる。続いて、IgA腎症患者の白血球および健常人の白血球から抽出したRNAから、アンカープライマーを用いてcDNAを合成し、続いて、該cDNAに対して5末端を蛍光標識したアンカープライマーと任意プライマーとを用いてPCR反応を行う。アンカープライマーとは、チミジンを除く、アデニン、グアニンあるいはシトシンのオリゴヌクレオチドを、mRNAの3末端ポリA配列に会合するオリゴdT配列の3末端に付加したプライマーである。任意プライマーとは、多種類のcDNAの配列に対して増幅し、かつ一度の反応で多数のcDNA増幅断片を得ることができるオリゴヌクレオチドのことであり、オリゴヌクレオチドの長さとしては、10mer程度が好ましい。PCR反応後、ポリアクリルアミドゲルで電気泳動し、フルオロイメージャーで蛍光を検出する。そして、IgA腎症患者および健常人の白血球由来のcDNA増幅断片の泳動パターンを比較し、発現増幅が変動しているcDNA断片をゲルから回収し、該cDNA増幅断片をベクターに組み込み、通常用いられる塩基配列解析方法、例えばSangerらのジデオキシ法[Proc.Natl.Acad.SciUSA74,5463]等によって分析することにより、該DNAの塩基配列を決定することができる。DNA断片を組み込むベクターとしては、pDIRECTヌクレイックアシッドリサーチ186069、pCRScriptAmpSKストラタジーン社製、ストラテジーズ,56264、pT7Blueノバジーン社製、pCRIIインビトロジェン社製、バイオテクノロジー9,657、pCRTRAPジーンハンター社製およびpNoTAT75プライム→3プライム社製などがあげられる。塩基配列の分析は、塩基配列自動分析装置、例えば373ADNAシークエンサーアプライドバイオシステムズ社製等を用いて行うことができる。本発明のDNAとしては、配列番号1から31に示される塩基配列からなるDNAもしくは該DNAとストリンジェントな条件下でハイブリダイズするDNA配列などがあげられる。配列番号1から31に示される塩基配列と、ストリンジェントな条件下でハイブリダイズするDNAとは、該蛋白質の本来有する活性を失わない範囲内で、置換、欠失、挿入あるいは付加などの変異が一カ所以上導入されたDNAで、配列番号1から31に示される塩基配列を有するDNAまたはその断片をプローブとして、コロニーハイブリダイゼーション法あるいはプラークハイブリダイゼーション法[モレキュラークローニング:アラボラトリーマニュアル、第2版サンブルック、フリッチ、マニアチス編集、コールドスプリングハーバーラボラトリープレス、1989年刊、以下、モレキュラークローニング:アラボラトリーマニュアル第2版と記す]により得られるDNAを示す。本発明のDNAの塩基配列に基づくオリゴヌクレオチドを用いてIgA腎症に関与するmRNAを検出する方法としては、ノーザンハイブリダイゼーション法MolecularCloning,AlaboratorymanualSecondedition,ColdSpringHarborLaboratoryPress、PCR法PCRプロトコールズアカデミックプレス1990などがあげられる。特に、RTRoomTempreture-PCR法は、簡便であり、IgA腎症の診断に利用することができる。具体的には、ヒトから採血し、白血球を回収し、そこから単離したRNAを、オリゴdTプライマーと逆転写酵素を用いてcDNAに変換した後、検出したいmRNAに対応する一組のオリゴヌクレオチドプライマーを用いてPCR反応を行い、増幅断片を検出する方法である。オリゴヌクレオチドプライマーとしては、検出したいmRNAの一部の塩基配列において、5’末端側の塩基配列に相当するセンスプライマーおよび3’末端側の塩基配列に相当するアンチセンスプライマーがあげられる。ただし、mRNAにおいてウラシルに相当する塩基は、オリゴヌクレオチドプライマーにおいてチミジンとなる。センスプライマーおよびアンチセンスプライマーとしては、両者の融解温度および塩基数が極端に変わることのないオリゴヌクレオチドを用いるのが好ましい。塩基数としては、15~40merが好ましい。上述のオリゴヌクレオチドプライマーを用いて増幅させる塩基配列部分としては、mRNAのいかなる塩基配列領域でもよいが、塩基配列の長さが50bpから2kbpであり、反復配列あるいはGCグアニンシトシン塩基に富む配列を含まぬ塩基配列領域が好ましい。また、同様にアンチセンスRNA/DNA化学46,681、バイオテクノロジー9,358を用いて、DNAの転写もしくはmRNAの翻訳を抑制することによりIgA腎症の治療に利用することもできる。アンチセンスRNA/DNA技術を用いて該蛋白質の生産を抑制するには、本発明の該蛋白質をコードするDNAの一部の塩基配列、好ましくは翻訳開始領域にある10~50塩基の塩基配列を基にしてオリゴヌクレオチドを設計調製し、生体内に投与するにことにより可能である。合成オリゴヌクレオチドの塩基配列としては、本発明の該蛋白質をコードするDNAのアンチセンス鎖の塩基配列の一部と一致するもの、あるいは該蛋白質の活性発現を抑制する活性を失わない範囲内で改変したものを利用できる。オリゴヌクレオチドとしてはDNA、RNAまたはその誘導体たとえばメチル体やフォスフォロチオエート体を用いることができる。前述した方法で得られたcDNA断片からDNA全長を得るには、前述したcDNA増幅断片をプローブとして、各種cDNAライブラリーよりハイブリダイゼーションによりスクリーニングして得ることができる。以下に、cDNAライブラリーの作製法について述べる。cDNAライブラリー作製法としては、モレキュラークローニング:アラボラトリーマニュアル第2版やカレントプロトコールズインモレキュラーバイオロジー、サプルメント1~34等に記載された方法、あるいは市販のキット、例えばスーパースクリプトプラスミドシステムフォーcDNAシンセシスアンドプラスミドクローニングSuperScriptTMPlasmidSystemforcDNASynthesisandPlasmidCloning、ライフテクノロジーズ社製やザップcDNAシンセシスキット[ZAPcDNASynthesisKit、ストラタジーンStratagene社製]を用いる方法などがあげられる。さらに、cDNAライブラリーを市販している場合もあり、本発明における、ギブコBRL社製のヒト白血球cDNAライブラリーなどcDNAライブラリーそのものの市販品もある。cDNAライブラリーの作製の際の、細胞から抽出したmRNAを鋳型として合成したcDNAを組み込むベクターは、該cDNAを組み込めるベクターであればいかなるものでも用いることができる。例えば、ZAPExpressストラテジーズ558、pBluescriptIISKヌクレイックアシッドリサーチ179494、λzapIIストラタジーン社製、λgt10、λgt11DNAクローニング、アプラクティカルアプローチ,Vol149、LambdaBlueMidクローンテック社製、λExCell、pT7T318Uファルマシア社製、pcD2モレキュラーアンドセルラーバイオロジー3,280およびpUC18ジーン,33,103等が用いられる。ベクターにより構築されるcDNAライブラリーを導入する大腸菌としては、該cDNAライブラリーを導入、発現および維持できるものであればいかなるものでも用いることができる。たとえばXL1BlueMRFストラテジーズ,5,811992、C600ジェネティックス,39,4401954、Y1088、Y1090サイエンス,222,778、NM522ジャーナルオブモレキュラーバイオロジー166,1、K802ジャーナルオブモレキュラーバイオロジー16118およびJM105ジーン,38,275等が用いられる。また、cDNAライブラリーを作製せずに、cDNAを合成後両端にアダプターを付加し、このアダプターの塩基配列と増幅断片の塩基配列に基づいたプライマーでPCRを行う5RACEおよび3RACE[プロシーディングスオブザナショナルアカデミーオブサイエンスオブザUSA858998]によっても得ることができる。また塩基配列に基づいたPCR法、あるいはDNA合成機で化学合成する方法によって得ることもできる。cDNAライブラリーからのcDNAクローンの選択としては、アイソトープあるいは蛍光標識したプローブを用いたコロニーハイブリダイゼーション法あるいはプラークハイブリダイゼーション法[モレキュラークローニング:アラボラトリーマニュアル第2版]により選択することができる。また、プライマーを調製し、ポリRNAあるいはmRNAから合成したcDNAあるいはcDNAライブラリーを鋳型として、ポリメラーゼチェインリアクション法[モレキュラークローニング:アラボラトリーマニュアル第2版、カレントプロトコールズインモレキュラーバイオロジー、サプルメント1~34]によりcDNAを調製することもできる。上記方法により選択されたcDNAクローンを、適当な制限酵素などで切断後、pBluescriptKSストラタジーン社製等のプラスミドにクローニングし、通常用いられる塩基配列解析方法、例えばSangerらのジデオキシ法Proc.Natl.Acad.SclUSA745463]等によって分析することにより、該DNAの塩基配列を決定することができる。塩基配列の分析は、塩基配列自動分析装置、例えば373ADNAシークエンサーアプライドバイオシステムズ社製等を用いて行うことができる。得られた塩基配列の新規性の確認は、GenBank、EMBLおよびDDBJなどの塩基配列データベースにより行う。上記方法によって得られたDNAとしては、例えば配列番号1で示される塩基配列を有するDNAもしくは該DNAとストリンジェントな条件下でハイブリダイズするDNAがあげられる。また、該塩基配列より推定されるアミノ酸配列を有する蛋白質としては、配列番号32記載のアミノ酸を有する蛋白質が含まれる。新規蛋白質をコードするDNAの調製および発現は、モレキュラークローニング:アラボラトリーマニュアル第2版、カレントプロトコールズインモレキュラーバイオロジーCurrentProtocolsinMolecularBiology、サプルメント1~34[アウスベル、ブレント、キングストン、ムーア、セイドマン、スミス、スツール編集、グリーンパブリシングアソシエイツアンドウエイリーインターサイエンス発行、19871996年版、以下、カレントプロトコールズインモレキュラーバイオロジー、サプルメント1~34と記す]等に記載された方法によって、行なうことができる。すなわち、前述した方法により得られた全長DNAを適当なベクターのプロモーター下流に挿入した組換え体ベクターを造成し、それを宿主細胞に導入することにより、本発明の蛋白質を発現する形質転換体を得ることができる。宿主としては、細菌、酵母、動物細胞、昆虫細胞など、目的とする遺伝子を発現できるものであれば、いずれでもよい。細菌としては、エシェリヒアコリEscherichiacoli、バチルスズブチリスBacillussubtilis、バチルスアミロリクエファシネスBacillusamyloliquefaciens、ブレビバクテリウムフラバムBrevibacteriumflavum、ブレビバクテリウムラクトファーメンタムBrevibacteriumlactofermentum、コリネバクテリウムグルタミクムCorynebacteriumglutamicum、ミクロバクテリウムアンモニアフィラムMicrobacteriumammoniaphilum等のエシェリヒア属、セラチア属、コリネバクテリウム属、ブレビバクテリウム属、シュードモナス属、バチルス属等の微生物が例示される。酵母としては、サッカロミセスセレビシエSaccharomycescerevisae、シゾサッカロミセスポンベ、クリュイベロミセスラクチス、トリコスポロンプルランスTrichosporonpullulans、シュワニオミセスアルビウスSchwanniomycesalluvius等が例示される。動物細胞としては、ヒトの細胞であるナマルバ細胞、サルの細胞であるCOS細胞、チャイニーズハムスターの細胞であるCHO細胞等が例示される。昆虫細胞としては、Spodopterafrugiperdaの卵母細胞であるSf9、Sf21[バキュロウイルスイクスプレッションベクターズ、アラボラトリーマニュアル、オレリー、ミラー、ルーコウ著、ダブリューエイチフリーマンアンドカンパニー、ニューヨーク、1992年版以下、バキュロウイルスイクスプレッションベクターズ、アラボラトリーマニュアルと記す]、Trichoplusianiの卵細胞であり、ファーミンジェン社からHigh5として市販されているTn5等が例示される。本発明のDNAを導入するベクターとしては、該DNAを組み込むことができ、宿主細胞で発現できるものであればいかなるベクターでも用いることができる。細菌、例えばエシェリヒアコリEscherichiacoliを宿主細胞として用いる場合には、プロモーター、リボゾーム結合配列、本発明のDNA、転写終結配列、場合によってはプロモーターの制御配列より構成されているのが好ましい。発現ベクターとしては、例えば、pKYP10特開昭58110600、pLSA1アグリカルチュラルアンドバイオロジカルケミストリー53277、pGEL1ProcNatlAcadSciUSA824306等が用いられる。プロモーターとしては、大腸菌等の宿主細胞中で発現できるものであればいずれを用いてもよい。例えば、trpプロモーターPtrp、lacプロモーターPlac、T7lacプロモーター、PLプロモーター、PRプロモーターなどの、大腸菌やファージ等に由来するプロモーターが用いられる。Ptrpを2つ直列させたプロモーターPtrp×2、tacプロモーターのように人為的に設計改変されたプロモーター等を用いてもよい。リボソーム結合配列としては、シャイン-ダルガノShineDalgarno配列以下、SD配列と略記すると開始コドンの間を適当な距離例えば、6~18塩基に調節して用いることが好ましい。本発明の組換えベクターにおいては、本発明のDNAの塩基配列が宿主細胞での発現に最適なコドンとなるように、必要に応じて塩基を置換して用いることが好ましい。本発明の組換えベクターにおいては、本発明のDNAの発現には転写終結配列は必ずしも必要ではないが、好適には構造遺伝子の直下に転写終結配列を配置することが好ましい。細菌への組換えベクターの導入方法としては、細菌にDNAを導入する方法であれば、例えば、カルシウムイオンを用いる方法Proc.Natl.Acad.Scl,USA,6921102114]、プロトプラスト法特開昭632483942等、いずれの方法も用いられる。酵母を宿主細胞として用いる場合には、発現ベクターとして、例えば、YEp13ATCC37115、YEp24ATCC37051、YCp50ATCC37419等が用いられる。プロモーターとしては、酵母中で発現できるものであればいずれのものを用いてもよいが、例えば、ヘキソースキナーゼ等の解糖系の遺伝子のプロモーター、gal1プロモーター、gal10プロモーター、ヒートショック蛋白質プロモーター、MFα1プロモーター、CUP1プロモーター等があげられる。酵母への組換えベクターの導入方法としては、酵母にDNAを導入する方法であれば、例えば、エレクトロポレーション法Methods.Enzymol194,182187、スフェロプラスト法Proc.Natl.Acad.Sci,USA8419291933、酢酸リチウム法[J.Bacteriol153,163168]等、いずれの方法も用いられる。動物細胞を宿主細胞として用いる場合には、発現ベクターとして、例えば、pAGE107特開平322979;サイトテクノロジー3133,,pAS33特開平2227075,pAMoERC3Sc,pcDM8ネイチャー329840,、pcDNAI/Amp、pcDNAIいずれもフナコシ社製等が用いられる。プロモーターとしては、動物細胞中で発現できるものであればいかなるものを用いてもよいが、例えば、サイトメガロウィルスCMVのIE遺伝子のプロモーター、SV40あるいはメタロチオネインのプロモーター等があげられる。また、ヒトCMVのIE遺伝子のエンハンサーをプロモーターとともに用いてもよい。動物細胞への組換えベクターの導入方法としては、動物細胞にDNAを導入する方法であれば、例えば、エレクトロポレーション法[Cytotechnology,3,133]、リン酸カルシウム法特開平2227075、リポフェクション法[Proc.Natl.Acad.Sci,USA,84,7413]等、いずれの方法も用いられる。昆虫細胞を宿主細胞として用いる場合には、例えばカレントプロトコールズインモレキュラーバイオロジー、サプルメント134、バキュロウイルスイクスプレッションベクターズ、アラボラトリーマニュアル等に記載された方法によって、タンパク質を発現することができる。すなわち、以下に述べる組換え遺伝子導入ベクターおよびバキュロウイルスを昆虫細胞に共導入して昆虫細胞培養上清中に組換えウイルスを得たのち、さらに組換えウイルスを昆虫細胞に感染させ、タンパク質発現昆虫細胞を取得する。遺伝子導入ベクターとしては、例えば、pVL1392、pVL1393、pBlueBacIIIともにインビトロジェン社製等が用いられる。バキュロウイルスとしては、例えば、夜盗蛾科昆虫に感染するウイルスであるアウトグラファカリフォルニカヌクレアーポリヘドロシスウイルスなどが用いられる。組換えウイルスを調製するための、昆虫細胞への上記組換え遺伝子導入ベクターと上記バキュロウイルスの共導入方法としては、例えば、リン酸カルシウム法特開平2227075、リポフェクション法[Proc.Natl.Acad.Scl,USA,84,7413]等が用いられる。以上のようにして得られる形質転換体を培地に培養し、培養物中に本発明の蛋白質を生成蓄積させ、該培養物から採取することにより、本発明の蛋白質を製造することができる。本発明の形質転換体を培地に培養する方法は、宿主細胞の培養に用いられる通常の方法に従って行われる。大腸菌あるいは酵母等の微生物を宿主細胞として得られた形質転換体を培養する培地としては、微生物が資化し得る炭素源、窒素源、無機塩類等を含有し、形質転換体の培養を効率的に行える培地であれば天然培地、合成培地のいずれを用いてもよい。炭素源としては、グルコース、フラクトース、スクロース、糖蜜、デンプン、デンプン加水分解物等の炭水化物、酢酸、プロピオン酸等の有機酸、エタノール、プロパノールなどのアルコール類が用いられる。窒素源としては、アンモニア、塩化アンモニウム、硫酸アンモニウム、酢酸アンモニウム、りん酸アンモニウム等の無機酸もしくは有機酸のアンモニウム塩またはその他の含窒素化合物の他、ペプトン、肉エキス、酵母エキス、コーンスチープリカー、カゼイン加水分解物、大豆粕および大豆粕加水分解物、各種発酵菌体またはその消化物等が用いられる。無機物としては、りん酸第一カリウム、りん酸第二カリウム、りん酸マグネシウム、硫酸マグネシウム、塩化ナトリウム、硫酸第一鉄、硫酸マンガン、硫酸銅、炭酸カルシウム等が用いられる。培養は、通常振盪培養または深部通気攪拌培養などの好気的条件下、15~40°Cで16~96時間行う。培養期間中、pHは30~90に保持する。pHの調整は、無機または有機の酸、アルカリ溶液、尿素、炭酸カルシウム、アンモニアなどを用いて行う。培養中は必要に応じて、アンピシリンやテトラサイクリン等の抗生物質を培地に添加してもよい。プロモーターとして誘導性のプロモーターを用いた発現ベクターで形質転換した微生物を培養するときには、必要に応じてインデューサーを培地に添加してもよい。例えば、lacプロモーターを用いた発現ベクターで形質転換した微生物を培養するときにはイソプロピル-β-D-チオガラクトピラノシドIPTG等を、trpプロモーターを用いた発現ベクターで形質転換した微生物を培養するときにはインドールアクリル酸IAA等を培地に添加してもよい。動物細胞を宿主細胞として得られた形質転換体を培養する培地としては、一般に使用されているRPMI1640培地、EagleのMEM培地またはこれら培地に牛胎児血清等を添加した培地等が用いられる。培養は、通常5CO2存在下、35~37°Cで3~7日間行い、培養中は必要に応じて、カナマイシン、ペニシリン等の抗生物質を培地に添加してもよい。昆虫細胞を宿主細胞として得られた形質転換体を培養する培地としては、一般に使用されているTNMFH培地[ファーミンジェンPharmingen社製]、Sf900IISFM[ライフテクノロジーズLifeTechnologles社製]、ExCell400、ExCell405[いずれもJRHバイオサイエンシーズJRHBiosciences社製]等が用いられる。培養は、25~30°Cで1~4日間行い、培養中は必要に応じて、ゲンタマイシン等の抗生物質を培地に添加してもよい。本発明の蛋白質が、細胞内に溶解状態で発現した場合または細胞内に不溶体を形成した場合には、培養終了後、細胞を遠心分離し、水系緩衝液にけん濁後、超音波法、フレンチプレス法などにより細胞を破砕し、その遠心分離上清に該蛋白質を回収する。さらに、細胞内に不溶体を形成した場合には、不溶体をタンパク質変性剤で可溶化後、タンパク質変性剤を含まないあるいはタンパク質変性剤の濃度がタンパク質が変性しない程度に希薄な溶液に希釈、或いは透析し、タンパク質の立体構造を形成せしめることができる。本発明の蛋白質あるいはその糖修飾体等の誘導体が細胞外に分泌された場合には、培養上清に該蛋白質あるいはその糖鎖付加体等の誘導体を回収することができる。単離精製については、溶媒抽出、有機溶媒による分別沈殿、塩析、透析、遠心分離、限外ろ過、イオン交換クロマトグラフィー、ゲルろ過クロマトグラフィー、疎水性クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィー、逆相クロマトグラフィー、結晶化、電気泳動などの分離操作を単独あるいは組み合わせて行うことができる。また、本発明の蛋白質は配列番号32記載のアミノ酸配列に基づいた、化学合成法によっても製造することができる。また、本発明の蛋白質、あるいは配列番号32記載のアミノ酸配列に基づいて化学合成した本発明の蛋白質の一部であるペプチドを抗原として免疫することにより、抗体を製造することができる。すなわち免疫した動物の脾細胞とマウスのミエローマ細胞とを融合させてハイブリドーマを作製し、このハイブリドーマを培養するか、動物に投与して該動物を腹水癌化させ、該培養液または腹水を採取することにより本発明の蛋白質に対するモノクローナル抗体を製造することができる。また、免疫した動物の免疫血清を採取することにより本発明の蛋白質に対するポリクローナル抗体を製造することができる。これらの抗体はIgA腎症の診断や治療に利用することができる。以下、本発明の実施例を示す。<IgA腎症患者および健常人の白血球のディファレンシャルディスプレイ>1IgA腎症患者および健常人の白血球からの全RNAの取得IgA腎症の患者5名および健常人5名各々から20ml採血し、1000単位/mlヘパリンナトリウム溶液清水製薬社製500μlを添加して凝固を抑制後、遠心チューブに移し、室温で3300rpm、15分間遠心後、白血球画分として中間層のバフィーコートを別の遠心チューブに移した。AGPC法実験医学9,1937,により全RNAを取得した。2IgA腎症患者および健常人の白血球全RNAを用いた蛍光ディファレンシャルディスプレイそれぞれの全RNA25μgについて蒸留水を全体が9μlになるように添加し、5’末端をフルオレセインイソチオシアネート以下、FITCと称すで蛍光標識したアンカープライマーサワディー社製50μM1μlを加えて70°Cで5分間加熱後、すぐ氷冷した。蛍光標識アンカープライマーとしては以下に示す3種類の配列のうちの1種類ずつ反応に用いるので、1サンプルの全RNAについて計3組の反応を行った。5×逆転写酵素反応用緩衝液250mMトリスヒドロキシメチルアミノメタンTrisHCl、375mMKCl、15mMMgCl24μl、100mMジチオスレイトールDTT2μl、10mMdNTPdATP、dGTP、dTTPおよびdCTP1μl、蒸留水1μl、逆転写酵素SUPERSCRIPTIIRNaseHReverseTranscriptaseBRL社製1μl200単位を添加して混合し、室温で10分間静置後、42°Cで50分間反応させてcDNAを合成し、90°C5分間加熱して反応を停止させた。この反応液にTE緩衝液10mMTrisHCl、1mMエチレンジアミン四酢酸二ナトリウムpH8040μlを添加した。続いて、合成した各々のcDNA1μlに、蒸留水147μl、10×PCR用緩衝液100mMTrisHCl、500mMKCl、15mMMgCl2、1トライトンX1002μl、25mMdNTP08μl、50μM蛍光標識アンカープライマーFAH、FGH、FGHのうちcDNA合成時に用いたのと同じ種類のもの03μl、10μM任意プライマーオペロン社製1μl、DNAポリメラーゼGeneTaqニッポンジーン社製、5単位/μl02μlを添加し、サーマルサイクラーにセットした。94°Cで3分間、40°Cで5分間、72°Cで5分間反応させた後、95°Cで15秒間、40°Cで2分間、72°Cで1分間からなる工程を1サイクルとして27サイクル反応を行い、最後に72°Cで5分間反応させてPCRを行った。蛍光標識アンカープライマーとしては前述した3種類のうちから1種類、任意プライマーとしては、オペロン社製のOPD1~20、OPE1~20およびOPV1~20の60種類のうちから1種類を組み合わせて反応を行うため、合計180組、さらに蛍光標識アンカープライマーFGHと任意プライマーOPB2オペロン社製の反応も行うため、1つの全RNAについて合計で181組の反応を行っている。各々のPCR反応液4μlに電気泳動サンプル用溶液3μlを添加し、95°Cで2分間加熱後すぐ氷冷し、6アクリルアミドゲル、1500V、25時間で電気泳動を行った。電気泳動用緩衝液としては89mMTris、89mMホウ酸、2mMEDTAを用いた。フルオロイメージャーモレキュラーダイナミックス社製を用いて電気泳動後のゲルの蛍光を測定することにより、PCRで増幅した断片を検出し、比較した。健常人5例に比較して、IgA腎症患者の白血球5例で共通して顕著に増加あるいは減少したバンドを記録した。再度、別のIgA腎症患者3例と健常人3例から全く同様に全RNAを取得し、同様にディファレンシャルディスプレイを行い、2度のディファレンシャルディスプレイでともに増加あるいは減少がみられた197バンドをゲルから切り出した。切り出したゲルの約14に蒸留水38μl、10×PCR用緩衝液5μl、25mMdNTP4μl、アンカープライマー蛍光標識なし:サワディー社製34μM06μl、10μM任意プライマー2μl、DNAポリメラーゼGeneTaq05μlを添加し、94°Cで3分間加熱後、95°Cで15秒間、40°Cで2分間、72°Cで1分間からなる工程を1サイクルとして30サイクル反応を行い、最後に72°Cで5分間反応させてPCRを行った。アンカープライマーおよび任意プライマーの組み合わせについては、最初に行ったディファレンシャルディスプレイ法と同様のものを用いた。反応後の液をフェノール-クロロホルム1:1抽出し、さらにクロロホルム-イソアミルアルコール24:1抽出後、エタノール沈殿をした。これを精製するため15低融点アガロースゲルシープラークGTGキットを使用し、キットの指示に従った。得られた塩基配列を配列番号1に示した。この塩基配列には143アミノ酸からなるオープンリーディングフレームORFが存在した。377AのcDNAの塩基配列をデータベースと比較したところ、N末の137アミノ酸に相当する部分は、ショウジョウバエのガン抑制遺伝子Sxlと相同性をもつヒトの遺伝子LUCA15のN末137アミノ酸に相当する部分と一致するが、その後に、全く相同性のない塩基配列が続き、ディファレンシャルディスプレイで得られた配列は、この全く相同性のない塩基配列中に存在することがわかった。"