"多孔質粒子を製造するための方法であって、セルロースおよびイオン液体を含む溶液を調製する工程;当該セルロース溶液をイオン液体と相溶しない液体に分散させて分散液を調製する工程;および当該分散液を、アルコールまたはアルコール水溶液と接触させることにより凝固させて多孔質粒子を得る工程を含むことを特徴とする製造方法。セルロース溶液の調製工程において、水および/またはアルコールを添加し、且つ当該水および/またはアルコールの添加量を、イオン液体との合計量に対して2重量以上、20重量以下にする請求項1に記載の製造方法。セルロース溶液の温度を0°C以上、70°C以下に調整する請求項1または2に記載の製造方法。分散液とアルコールまたはアルコール水溶液とを10°C以上で接触させる請求項1~3のいずれかに記載の製造方法。請求項1~4のいずれかに記載の方法で製造されたものであることを特徴とする多孔質粒子。カラムに充填し、目的吸着物質以上の分子量を有する複数のタンパク質の分配係数を測定し、縦軸にKav、横軸に分子量の対数をプロットし、式Iが成り立つ部分においてk≦-0.1である請求項5に記載の多孔質粒子。Kav=klnMWbI[式中、Kavは分配係数を示し、MWはタンパク質の分子量を示し、bは定数を示す]カラムに充填して測定した目的吸着物質のKavが0.3以上である請求項6に記載の多孔質粒子。カラムに充填して測定したIgGのKavが0.3以上である請求項6に記載の多孔質粒子。排除限界分子量が103以上、109以下である請求項5~8のいずれかに記載の多孔質粒子。請求項1~4のいずれかに記載の製造方法で製造された多孔質粒子または請求項5~9のいずれかに記載の多孔質粒子とアフィニティーリガンドとを含み、アフィニティーリガンドが多孔質粒子に固定化されていることを特徴とする吸着体。アフィニティーリガンドの導入量が、多孔質粒子1mL当たり1mg以上、1000mg以下である請求項10に記載の吸着体。セルロース含量が2重量以上、50重量以下である請求項10または11に記載の吸着体。多孔質粒子が架橋されているものである請求項10~12のいずれかに記載の吸着体。10圧縮時の圧縮応力が0.01MPa以上、3MPa以下である請求項10~13のいずれかに記載の吸着体。体積平均粒径が1μm以上2000μm以下である請求項10~14のいずれかに記載の吸着体。アフィニティーリガンドがプロテインAである請求項10~15のいずれかに記載の吸着体。請求項10~16のいずれかに記載の吸着体をカラムに充填する工程;当該カラムに粗タンパク質を含む溶液をカラムに充填された吸着体に通液する工程;および溶離液をカラムに通液する工程を含むことを特徴とするタンパク質の精製方法。本発明の目的は、様々な物質の吸着体として利用可能な多孔質のセルロース粒子を、チオシアン酸カルシウム溶液など毒性が高い溶媒を使わず安全かつ簡便に製造する方法を提供することである。また、本発明は、当該方法で製造された多孔質粒子、当該多孔質粒子を含み、純度の高いタンパク質を安全かつ効率的に精製できる吸着体と、当該吸着体を用いたタンパク質の精製方法を提供することも目的とする。本発明者らは、上記課題を解決すべく鋭意研究を行った。その結果、イオン液体にセルロースを溶解させた上で特定の溶媒と接触させることにより、タンパク質吸着体の材料として適度な大きさと適度な孔を有するアモルファス状の多孔質粒子を安全かつ効率的に製造できることを見出して、本発明を完成した。本発明に係る多孔質粒子の製造方法は、セルロースおよびイオン液体を含む溶液を調製する工程;当該セルロース溶液をイオン液体と相溶しない液体に分散させて分散液を調製する工程;および、当該分散液を、アルコールまたはアルコール水溶液と接触させることにより凝固させて多孔質粒子を得る工程を含むことを特徴とする。本発明方法のセルロース溶液の調製工程においては、水および/またはアルコールを添加し、且つ当該水および/またはアルコールの添加量を、イオン液体との合計量に対して2重量以上、20重量以下にすることが好ましい。かかる態様により、多孔質粒子の内部構造を制御することが可能になる。より具体的には、当該溶液にセルロースの貧溶媒を加えることにより、多孔質粒子の孔径をより均一化することが可能になる。本発明方法では、セルロース溶液の温度を0°C以上、70°C以下に調整することが好ましい。当該温度が0°C以上であれば、イオン液体に対するセルロースの溶解度が高くなり、また、セルロース溶液の粘度が低くなって分散液が調製し易くなる。また、当該温度が70°C以下であれば、セルロース溶液や分散液の調製時においてイオン液体以外の溶媒が揮発し難くなる。また、分散液とアルコールまたはアルコール水溶液とを10°C以上で接触させることが好ましい。理由は明らかではないが、本発明者らは、分散液とアルコールまたはアルコール水溶液とを接触させる際の温度を高くすればするほど得られる多孔質粒子の細孔径が大きくなることを見出した。従って、当該温度としては10°C以上が好ましい。本発明に係る多孔質粒子は、上記本発明方法で製造されたものであることを特徴とする。また、本発明に係る吸着体は、上記本発明に係る多孔質粒子とアフィニティーリガンドとを含み、アフィニティーリガンドが多孔質粒子に固定化されていることを特徴とする。本発明に係る多孔質粒子および吸着体としては、カラムに充填し、目的吸着物質以上の分子量を有する複数のタンパク質の分配係数を測定し、縦軸にKav、横軸に分子量の対数をプロットし、式Iが成り立つ部分においてk≦-0.1であるものが好適である。Kav=klnMWbI[式中、Kavは分配係数を示し、MWはタンパク質の分子量を示し、bは定数を示す]式Iにおけるkの値が-0.1以下であれば、吸着物質の分子量における比表面積は大きくなるので、より優れた吸着能が発揮される。また、カラムに充填して測定した目的吸着物質、特にIgGのKavが0.3以上である多孔質粒子が好適である。Kavが0.3以上であれば、吸着物質の分子量における比表面積は大きくなり、効率よく吸着することが可能である。本発明に係る多孔質粒子および吸着体において、排除限界分子量としては103以上、109以下が好ましい。排除限界分子量がこの範囲にあれば、本発明に係る多孔質粒子および吸着体を用いて、多くの有用タンパク質の精製が可能になる。本発明吸着体としてはアフィニティーリガンドの導入量が、多孔質粒子1mL当たり1mg以上、1000mg以下であるものが好ましい。当該導入量が1mL以上であれば、十分な吸着能をより確実に確保することができる。一方、過剰量のアフィニティーリガンドを担体へ導入することは難しい場合があり、生産性が落ちるおそれがあり得るので、当該導入量としては1000mg以下が好適である。本発明に係る多孔質粒子および吸着体におけるセルロース含量としては、2重量以上、50重量以下が好ましい。セルロース含量が2重量以上であれば、大スケール、高線速で精製を行っても圧密化を生じない吸着体が得られる。また、セルロース含量が50重量以下であると、精製目的物を通すことができる十分な孔を確保することができる。本発明吸着体の担体である多孔質粒子としては、架橋されているものが好適である。架橋されている多孔質粒子は強度に優れているため、高線速下や高圧力下の使用にも耐えることができる。本発明に係る多孔質粒子および吸着体の10圧縮時の圧縮応力としては、0.01MPa以上、3MPa以下が好ましい。当該圧縮応力が0.01MPa以上であれば、高線速下で通液しても、圧密化し難くなる。また、当該圧縮応力が3MPa以下であれば、脆性が改善され、微粒子発生がより確実に抑制される。本発明に係る多孔質粒子および吸着体の体積平均粒径としては、1μm以上、2000μm以下が好ましい。体積平均粒径が20μm以上であれば、圧密化がより起こり難くなり、1000μm以下であれば、目的物の吸着量がより大きくなり得る。本発明吸着体のアフィニティーリガンドとしては、プロテインAが好ましい。本発明に係るタンパク質の精製方法は、上記本発明吸着体をカラムに充填する工程;当該カラムに粗タンパク質を含む溶液をカラムに充填された吸着体に通液する工程;および、溶離液をカラムに通液する工程を含むことを特徴とする。本発明方法によれば、従来使用されていたチオシアン酸カルシウム溶液などを用いる必要が無く、より安全且つ低コストでセルロース多孔質粒子を製造することができる。また、本発明方法においてチオシアン酸カルシウム溶液の代わりに用いられるイオン液体、および当該イオン液体と相溶しない液体は、使用後に分離回収が可能であり、再利用できるので、本発明方法は工業的な大量生産にも適する。また、本発明方法によれば、セルロース多孔質粒子の硬度や内部構造などを変化させることも可能であり、特に、アモルファス状のセルロース多孔質粒子が得られる。よって、本発明方法により、様々な物質の吸着体の担体として利用可能なセルロース多孔質粒子を提供することが可能となる。さらに本発明方法では、セルロース溶液の分散液の粘度は、イオン液体と相溶しない液体に依存するため、高濃度のセルロース溶液の操作時の見かけ粘度を低く抑えることができ、取扱性を大きく改善することができる。また、本発明方法で得られるセルロース多孔質粒子は、タンパク質などの吸着体の担体として非常に有用である。以下、本発明方法を実施の順番に従って説明する。1溶液調製工程本発明に係る製造方法では、まず、セルロースおよびイオン液体を含む溶液を調製する。イオン液体とは、一般に、常圧100°C未満で液体であるイオン化合物である。イオン液体のカチオン部分の例は、ピリジニウム、イミダゾリウムおよびイミダゾール等が挙げられ、非環状カチオンとしては、アルキル第4級アンモニウムおよびアルキル第4級リンカチオン等が挙げられる。カチオン部分の対アニオンは、ハロゲンイオン、擬ハロゲンイオン、ハロゲンを含む有機化合物である有機ハロゲン化物イオンおよびカルボキシレート等からなる群より選択される。カルボキシレートとしては、アセテート、シトレート、マレート、マレエート、ホルメートおよびオキシレートが挙げられ、ハロゲンイオンとしては、クロリド、ブロミド、亜鉛クロリド/コリンクロリドが挙げられ、有機ハロゲン化物イオンとしては、テトラフルオロホウ酸イオン、ヘキサフルオロリン酸イオン、CF3SO2、CF3SO22N、CF3CO2、3-メチル-N-ブチル-ピリジニウムクロリドおよびベンジルジメチルテトラデシアンモニウムクロリドが挙げられる。本発明に使用可能なセルロースとしては、イオン液体に溶解するものであれば、いかなるものでも用いることができる。例えば、再生セルロース、結晶性セルロースmicrocrystallinecellulose、酢酸セルロースから選択される1種以上を用いることができる。特に、平均重合度が100以上、700以下程度の結晶性セルロースが好ましい。平均重合度が100以上であれば、得られる多孔質粒子の強度を十分なものとすることができる。一方、平均重合度が高過ぎると、セルロース溶液の粘度が過剰に高くなり得るため、平均重合度としては700以下が好ましい。より好ましい平均重合度は100以上、500以下、さらに好ましくは150以上、350以下、特に好ましくは200以上、300以下であり、中でも300程度の結晶性セルロースが良好である。なお、平均重合度の高いものを用いる場合には、貧溶媒の添加や、高温での操作がセルロース溶液の粘度を下げるために有効である。セルロースの使用量は特に制限されず、適宜調整すればよい。例えば、セルロース溶液100重量に対して2重量以上、50重量以下が好ましい。当該濃度が2重量以上であれば、本発明方法により、大スケールや高線速で精製を行っても圧密化を生じない吸着体が得られる。また、当該濃度が50重量以下であると、精製目的物を通すことができる十分な孔を確保することができる。また、当該濃度が高過ぎると溶液の粘度が過剰に高くなって操作性が悪くなるおそれがあり得るので、当該濃度としては50重量以下が好適である。当該濃度としては、3重量以上がより好ましく、4重量以上がさらに好ましく、5重量以上が特に好ましく、また、30重量以下がより好ましく、20重量以下がさらに好ましく、15重量以下が特に好ましい。溶液の調製方法は特に制限されず、常法を用いればよい。例えば、単にセルロースとイオン液体を混合し、セルロースが十分に溶解されるまで加温したり攪拌したりすればよい。セルロースおよびイオン液体を含む溶液は、セルロースが析出しない程度でさらに水および/またはアルコールより選択される1種以上を添加することにより、多孔質粒子の内部構造を制御することが可能になる。より具体的には、当該溶液にセルロースの貧溶媒を加えることにより、多孔質粒子の孔径をより均一化することが可能になる。なお、アルコール水溶液を添加する場合、アルコール濃度は適宜調整すればよいが、例えば、水:アルコール類=80:20~5:95体積比とすることができる。水および/またはアルコールの添加量は、常温でセルロースが析出しない範囲で適宜調整すればよいが、例えば、添加すべき水および/またはアルコールとイオン液体との合計量に対して2重量以上、20重量以下とすることができる。当該添加量が2重量以上であれば、多孔質粒子の孔径の均一化効果をより確実に発揮することができる。一方、当該添加量が多過ぎるとセルロースが析出する可能性があり得るので、当該添加量は20重量以下とすることが好ましく、15重量以下がより好ましい。セルロースをイオン液体に溶解するに当たっては、加温してもよい。ただし、一般的なイオン液体は100°C未満で液体であるため、温度は100°C未満とすることが好ましい。より好ましくは、50°C以上、90°C以下とする。また、溶解を容易にするために、セルロースを事前に微細化しておいてもよい。2分散化工程次に、得られたセルロース溶液をイオン液体と相溶しない液体に分散させ、分散液を調製する。上記セルロース溶液は、イオン液体と相溶しない液体に分散させる前または分散中に、その温度を0°C以上、70°C以下に調整することが好ましい。当該温度が0°C以上であれば、イオン液体に対するセルロースの溶解度が高くなり、また、セルロース溶液の粘度が低くなって分散液が調製し易くなる。また、当該温度が70°C以下であれば、セルロース溶液や分散液の調製時においてイオン液体以外の溶媒が揮発し難くなる。イオン液体と相溶しない液体としては、使用したイオン液体1gまたは1mLを25°Cで溶解するのに1000mL以上を要する液体が好ましい。かかる液体としては、使用するイオン液体の種類などにもよるが、例えば、ヘキサン、酢酸エチル、炭素数6~12の直鎖状飽和脂肪酸、炭素数16~24の不飽和脂肪酸、融点が100°C以下の動植物油脂類、水素添加動植物油、動植物油脂類やその水素添加物の高融点画分を分別精製した分別油、飽和脂肪酸トリグリセリド類、食用ワックス類、微細藻類由来油脂類、微生物油脂類、中鎖脂肪酸トリグリセリド類、不飽和脂肪酸トリグリセリド類などを挙げることができる。本発明で用いられる油脂は、融点が100°C以下であれば特に限定されない。例えば、パーム油、シア脂、サル脂、イリッペ脂、豚脂、牛脂、ナタネ油、米油、落花生油、オリーブ油、コーン油、大豆油、シソ油、綿実油、ヒマワリ油、月見草油、ゴマ油、サフラワー油、ヤシ油、カカオ脂、パーム核油、魚油等の動植物油脂類;パーム硬化油、パーム極度硬化油、ナタネ硬化油、ナタネ極度硬化油、大豆硬化油、豚脂硬化油、魚油硬化油等の水素添加動植物油;動植物油脂類やその水素添加物の高融点画分を分別精製した、ヤシ分別油、パーム核油分別油、パーム分別油、カカオ脂分別油、シア脂分別油、豚脂分別油、大豆硬化油分別油、魚油硬化油分別油等の分別油;トリステアリン、トリパルミチン、トリラウリン等の飽和脂肪酸トリグリセリド類;これらのモノグリセリド、ジグリセリド、脂肪酸等の部分グリセリド類;ミツロウ、キャンデリラロウ、米ぬかロウ等の食用ワックス類;ワカメ油やコンブ油等の海藻由来油脂類;スピルリナ抽出油等の微細藻類由来油脂類;酵母抽出油やモルティエラ属抽出油等の微生物油脂類;これらの低融点画分を分別精製したパーム低融点画分、魚油低融点画分、シア脂低融点画分等の分別油;トリカプリリン、トリカプリン等の中鎖脂肪酸トリグリセリド類;トリオレイン、トリリノール等の不飽和脂肪酸トリグリセリド類;これらのモノグリセリド、ジグリセリド等の部分グリセリド類;オレイン酸、リノール酸、リノレン酸、アラキドン酸、イコサペンタエン酸、ドコサヘキサエン酸等の脂肪酸類を挙げることができる。イオン液体と相溶しない液体は、1種のみ単独で用いてもよく、2種以上を混合して用いてもよい。2種以上を混合する場合の例としては、炭素数の異なる飽和脂肪酸の混合溶媒、炭素数の異なる不飽和脂肪酸の混合溶媒、飽和脂肪酸と不飽和脂肪酸の混合溶媒を挙げることができる。イオン液体と相溶しない液体中にイオン液体を分散させるために、界面活性剤を用いてもよい。界面活性剤としては、例えば、N-アシル-L-グルタミン酸トリエタノールアミン、N-アシル-L-グルタミン酸ナトリウム、塩酸アルキルジアミノエチルグリシン液、ジメチコンコポリオール、ポリオキシエチレンオクチルフェニルエーテル、ポリオキシエチレンステアリルエーテル、ポリオキシエチレンセチルエーテル、ポリオキシエチレンポリオキシプロピレングリコール、モノステアリン酸グリセリン、モノステアリン酸プロピレングリコール、モノステアリン酸ポリオキシエチレングリセリン、モノステアリン酸ポリオキシエチレンソルビタン、モノウリン酸ポリエチレングリコールなどを挙げることができる。セルロースへの着色抑制や溶液粘性などの観点から、界面活性剤としては中鎖脂肪酸トリグリセリド類が好ましい。セルロース溶液を上記液体に分散させることにより、セルロース溶液の液滴を形成させる。イオン液体と相溶しない液体とセルロース溶液の使用量は特に制限されず適宜調整すればよいが、例えば、上記液体:セルロース溶液=98:2~50:50体積比とすることができる。当該体積比としては、97:3~70:30が好ましく、97:3~80:20がより好ましい。セルロース溶液の分散方法は特に限定しないが、例えば攪拌翼を用いた攪拌やホモジナイザーを用いた攪拌により、イオン液体と相溶しない液体中にセルロース溶液を均一に分散させることが可能である。さらに静止型ミキサーも用いることができる。3凝固工程次に、上記分散液を、アルコールまたはアルコール水溶液と接触させることにより凝固させて、多孔質粒子とする。当該工程により、液滴中のイオン液体を抽出し、セルロースを不溶化して凝縮させることにより、セルロースからなる多孔質粒子を得ることができる。当該工程で用いるアルコールとしては、メタノール、エタノール、1-プロパノール、2-プロパノール、n-ブタノール、イソブタノール、2-ブタノール、sec-ブタノール、2-メチル-2-プロパノールtert-ブタノール、1-ペンタノール、2-ペンタノール、3-ペンタノール、2-メチル-1-ブタノール、3-メチル-1-ブタノール、2-メチル‐2‐ブタノール、3‐メチル‐2‐ブタノール、1-ヘキサノール、2-ヘキサノール、3-ヘキサノールなどのC16アルコール類を挙げることができる。アルコール水溶液の濃度も特に制限されず、適宜調整すればよいが、例えば、水:アルコール類=80:20~5:95体積比とすることができる。また、本発明者らは、驚くべきことに、アルコール水溶液における水の体積比が大きいほど多孔質粒子の細孔が大きくなり、アルコール類の体積比が大きいほど多孔質粒子の真球度が大きく且つアモルファス状になることを見出した。これらの観点から、当該割合としては、70:30~10:90がより好ましく、50:50~10:90がさらに好ましく、40:60~20:80が特に好ましい。上記分散液とアルコールまたはアルコール水溶液との接触方法は特に制限されず、分散液はアルコールまたはアルコール水溶液を全量または一部ずつ添加してもよいし、アルコールまたはアルコール水溶液へ全量または一部ずつ分散液を添加してもよい。好適には、アルコールまたはアルコール水溶液を攪拌しておき、ここへ分散液を徐々に添加する。アルコールまたはアルコール水溶液の使用量は特に制限されず、イオン液体を抽出するに十分量を用いればよいが、例えば、分散液に対する体積比で1以上、5以下とすることができる。接触時の温度も特に制限されず、イオン液体の融点以上、使用するアルコールの沸点以下とすることが好ましい。当該温度をイオン液体の融点以下にすると、セルロース粒子中からイオン液体が放出されにくくなるおそれがあり得る。一方、アルコールの沸点以上にすると、還流装置が必要となるなどコストが上がってしまう。当該温度としては、10°C以上、60°C以下が好ましく、25°C以上、60°C以下がより好ましく、40°C以上、55°C以下が特に好ましい。なお、凝固したセルロース粒子の多孔性は、驚くべきことにセルロース溶液とアルコールまたはアルコール水溶液の温度に影響を受け、溶液温度が高いほどセルロース粒子の細孔径は大きくなる。この点でも、当該温度を上記好適範囲にすることが好ましい。なお、セルロース多孔質粒子の細孔径としては、例えば、最大径で200Å以上、1500Å以下、平均径で100Å以上、400Å以下が好ましい。平均径としては、140Å以上、400Å以下がより好ましく、200Å以上、400Å以下がさらに好ましい。以上で得られるセルロース粒子は多孔質であり、その孔の大きさや硬度などは、セルロース濃度、分散液温度、セルロース非溶解性の液体を変えることで制御することが可能である。4回収工程次に、得られた多孔質粒子を回収すればよい。回収手段は特に制限されず、濾過や遠心分離など一般的な固液分離手段を用いることができる。得られた多孔質粒子は、必要であれば、孔内に残留しているイオン液体やセルロース非溶解性液体を除去するために、水やアルコール類で洗浄した後、減圧下、乾燥してもよい。また、使用したイオン液体は、固液分離後の液体からセルロース非溶解性液体を蒸発させることで回収可能である。5架橋工程上記本発明方法で得られた多孔質粒子は、架橋剤にて強度をさらに増すことが可能である。架橋剤や架橋反応条件に特に限定は無く、公知の技術を用いて行うことができる。例えば架橋剤としては、エピクロロヒドリン、エピブロモヒドリン、ジクロロヒドリンなどのハロヒドリン;2官能性ビスエポキシドビスオキシラン;多官能性ポリエポキシドポリオキシランを挙げることができる。多孔質粒子の大きさは特に限定されるものではないが、一般的に1μm以上、2mm以下程度が好ましい。例えば、精製用吸着体の担体として場合、体積平均粒径は20μm以上、1000μm以下が好ましい。多孔質粒子の体積平均粒径が20μm以上であれば、圧密化が起こり難いため好ましく、1000μm以下であれば精製用吸着体の担体に用いた場合の精製目的物の吸着量が大きくなるため好ましい。多孔質粒子の体積平均粒径としては、20μm以上がより好ましく、30μm以上がさらに好ましく、50μm以上が特に好ましく、60μm以上が最も好ましく、また、500μm以下がより好ましく、250μm以下がさらに好ましく、125μm以下が特に好ましく、95μm以下が最も好ましい。体積平均粒径は、ランダムに選んだ100個の多孔質粒子の粒径を測定して求めることができる。個々の多孔質粒子の粒径は、個々の多孔質粒子の顕微鏡写真を撮影して電子データとして保存し、メディアサイバネティックス社製のイメージプロプラスなどの粒径測定ソフトウェアを用いて測定することができる。或いは、レーザ回折/散乱式粒子径分布測定装置を用いて測定することもできる。なお、多孔質粒子の大きさは、例えば、分散時や、分散液とアルコールまたはアルコール水溶液との接触時における攪拌強度や界面活性剤の種類などによって調節することが可能である。次に、上記で得られたセルロース多孔質粒子を担体として用い、吸着体を製造する方法について説明する。6アフィニティーリガンドの固定化工程タンパク質の吸着体を製造するには、目的吸着物質に対して親和性の高いアフィニティーリガンドを、上記セルロース多孔質粒子に固定化する。アフィニティーリガンドとは、特定の目的物質と相互作用し、特異的に親和力を有し得る分子または化合物を意味する。例えば、抗体が目的吸着物質である場合、特異的に相互作用する抗原やタンパク質、抗体結合活性を有するペプチド等を挙げることができる。本発明の吸着体のために用いることができるアフィニティーリガンドに特に限定は無く、所望のアフィニティーリガンドを固定化するために活性化された多孔質担体を用いて、様々なアフィニティーリガンドを固定化することができる。固定化方法としては、例えば非特許文献3の表81、表82、図815に示されるような、臭化シアン法、トリクロロトリアジン法、エポキシ法、トレシルクロリド法、過ヨウ素酸酸化法、ジビニルスルホン酸法、ベンゾキノン法、カルボニルジイミダゾール法、アシルアジド法等を用いてアミノ基含有リガンドを固定化する方法;エポキシ法、ジアゾカップリング法等を用いて水酸基含有リガンドを固定化する方法;エポキシ法、トレシルクロリド法、ジビニルスルホン酸法等を用いて、チオール基含有リガンドを固定化する方法;アミノ化担体にカルボン酸含有リガンドやホルミル基含有リガンドを固定化する方法等の様々な固定化方法を挙げることができる。本発明の吸着体は、精製用吸着体として用いることが可能であるが、近年注目されている抗体医薬品精製用吸着体としても用いることが可能である。抗体医薬品精製用吸着体などに用いられる場合のアフィニティーリガンドとしては、特に限定は無いが、例えば、抗体に特異性の高い抗原やタンパク質や、プロテインG、プロテインLやそれら変異体、抗体結合活性を有するペプチド等のアミノ基含有リガンドを挙げることができる。特に、免疫グロブリン特にIgGを特異的に吸着、溶出できる吸着体として、プロテインAをアフィニティーガンドとして多孔質担体に固定化した吸着体が注目されている。本発明に用いることができるプロテインAには特に限定は無く、天然物、遺伝子組み換え物等を制限なく使用することができる。また、抗体結合ドメイン及びその変異体を含むもの、融合蛋白質等であってもよい。また、菌体抽出物もしくは培養上清より、イオン交換クロマトグラフィー、疎水性相互作用クロマトグラフィー、ゲルろ過クロマトグラフィー、ヒドロキシアパタイトクロマトグラフィー等の各種クロマトグラフィー及び膜分離技術を用いた分子量分画、分画沈殿法等の手法から選択される精製法を組合せ、および/または繰り返すことにより製造された、プロテインAを用いることもできる。特に、国際公開特許公報WO2006/004067や米国特許公報US5151350、WO2003/080655、特開2006-304633、特願2009-071766に記載されている方法で得られたプロテインAであることが好ましい。プロテインAをアフィニティーリガンドとして多孔質粒子に導入する方法としては、前述の様々な固定化方法から選択することができるが、より好ましいのは多孔質粒子が含有するホルミル基と、プロテインAのアミノ基との反応を利用して固定化を行う方法である。例えば、特許文献1に記載の方法がある。本発明の吸着体のアフィニティーリガンドの導入量は、特に制限されないが、例えば、多孔質担体1mL当り、1mg以上、1000mg以下とすることができる。当該割合が1mg以上であれば、精製目的物に対する吸着量が大きくなるため好ましく、1000mg以下であれば、製造コストを抑制できるため好ましい。アフィニティーリガンドの導入量としては、多孔質担体1mL当り、2mg以上がより好ましく、4mg以上がさらに好ましく、5mg以上が特に好ましく、また、500mg以下がより好ましく、250mg以下がさらに好ましく、200mg以下が特に好ましく、100mg以下が最も好ましい。以下に、多孔質粒子を吸着体のための多孔質担体として利用する場合の好ましい物性について説明する。多孔質粒子を吸着体のために用いる場合、その細孔径が重要な要素の一つとなる。例えば、目的吸着物質よりも細孔径が小さいと、吸着体担体の表面でしか吸着することができず、吸着量が低いおそれがある。また、細孔径が大き過ぎると比表面積が小さくなり、吸着量が低くなるおそれがある。このため、目的吸着物質に適した細孔径を持つ多孔質担体が好ましい。多孔質粒子の細孔径に関する物性の一つにKavがある。Kavとはゲル相分配係数をいい、所定の大きさの分子に対する溶出または保持容量VRVeとも表される、空隙容量Voおよびカラムの幾何容量Vcから次式で算出される、カラムとは独立した変数である。Kav=VR-V0/Vt-V0例えば、HandbookofProcessChromatography,AGuidetoOptimization,Scale-Upandvalidation1997AcademicPress,SanDiego.GailSoferLarsHageleds.ISBN0-12-654266-X,p.368参照細孔径の正確な値などではなく、Kav値を用いる理由は、カラムクロマトグラフィーのため多孔質粒子を溶媒に分散してゲルのような湿潤状態とした場合、細孔径を正確に測定するのが困難であり、また、乾燥状態で測定された推定細孔径が湿潤状態の細孔径を正確には反映しないためである。縦軸にKav、横軸に分子量の対数をプロットした際に、目的吸着物質の分子量以上の分子量領域での直線の傾きが-0.1以下である多孔質担体にアフィニティーリガンドを固定化することで、吸着量の向上が可能である。即ち、目的吸着物質の分子量以上の分子量領域において式Iが成り立つとき、k≦-0.1である多孔質担体にアフィニティーリガンドを固定化した吸着体であることが好ましい。Kav=klnMWbI[式中、kは傾きを示し、MWはKav測定時のマーカーの分子量を示し、bは定数を示す]式Iにおいて、kがより小さい方が、吸着物質の分子量における比表面積は大きくなり、吸着量の向上が可能である。そのため、好ましくはk≦-0.15、より好ましくはk≦-0.20、さらに好ましくはk≦-0.30、特に好ましくは-5.0≦k≦-0.35である。また、目的吸着物質の分子量におけるKavが0.3以上であることが好ましい。目的吸着物質の分子量におけるKavが0.3以上であれば、吸着物質の分子量における比表面積は大きくなり、効率よく吸着することが可能である。Kavとしては、0.55以上がより好ましく、0.65以上がさらに好ましく、0.75以上が特に好ましい。また、Kavが0.94以下であることが好ましい。Kavが0.94より大きいと、樹脂含量が少なくなり、吸着体の強度が下がる恐れがある。多孔質担体の排除限界分子量は、目的吸着物質の分子量よりも大きいことが好ましい。しかし、細孔径が大きく、排除限界分子量が目的吸着物質の分子量より遥かに大きい場合、吸着効率が低下する。例えば、精製用吸着体として用いる場合、目的吸着物質がタンパク質であることが多く、一般的に、タンパク質の分子量は103以上、108以下程度であるため、排除限界分子量を103以上、109以下程度に設定することが好ましい。例えば、IgGを目的吸着物質とするならば排除限界分子量を106以上、108以下程度に設定するのが好ましい。排除限界分子量は、従来公知の方法を用いて求めることができる。例えば、排除限界分子量はKavが0のときの分子量であるので、上記式IのKavに0を代入した下記式IIにより求めることができる。排除限界分子量=exp-b/kIIKavや排除限界分子量など細孔径に関する物性を正確に測定するためには、吸着体に吸着しない化合物を用いて測定するのが好ましく、リガンドを固定化する前の多孔質粒子を用いて測定するのがより好ましい。吸着体を用いて測定する場合、目的吸着物質の分子量と同等の化合物を用いて測定したり、目的吸着物質の分子量前後の化合物を用いてそれぞれ測定し、測定して得られた2点を直線で結んで予測する等の工夫が必要となる。また、測定に用いるマーカー化合物は、目的吸着物質と類似の化合物であることが好ましい。例えば、ポリスチレンのような合成ポリマーとタンパク質とでは、同じ分子量でも測定溶液中での体積が異なる。よって、例えば、目的吸着物質が抗体の場合は、マーカー化合物としてタンパク質を用いることが好ましい。イオン液体を用いれば、高濃度のセルロース溶液を調製可能であり、上記の本発明方法によれば、従来の方法では得られなかったセルロース含量の高い多孔質粒子が製造可能である。一般に、樹脂含量が高いと圧密化を生じない吸着体が得られる。本発明の吸着体の充填体積あたりのセルロース含量に特に限定は無いが、2重量以上、50重量以下であることが好ましい。充填体積あたりのセルロース含量が2重量以上であれば、大スケール、高線速で精製を行っても圧密化を生じない吸着体が得られるため好ましい。また、充填体積あたりのセルロース含量が50重量以下であると、精製目的物を通すことができる十分な孔を確保することができるため好ましい。また、充填体積あたりのセルロース含量としては、3重量以上がより好ましく、4重量以上がさらに好ましく、また、25重量以下がより好ましく、15重量以下がさらに好ましい。充填体積あたりのセルロース含量は、下記式IIIに従って、以下のとおり求めることができる。即ち、多孔質粒子体積が減少しなくなるまで沈降させて充填し、多孔質粒子体積が1mLとなるよう多孔質粒子量を調整する。この粒子を105°Cで12時間乾燥させ、充填体積当たりの乾燥重量gから、ゲル1mL当たりの乾燥重量パーセント、つまりセルロース含量を求めることができる。セルロース含量=[乾燥重量g/充填体積mL]×100III本発明の吸着体としては、5圧縮時の圧縮応力が0.005MPa以上、1MPa以下、10圧縮時の圧縮応力が0.01MPa以上、3MPa以下、および15圧縮時の圧縮応力が0.03MPa以上、5MPa以下のものが好ましい。吸着体の5圧縮時の圧縮応力が0.005MPa以上、10圧縮時の圧縮応力が0.01MPa以上、および15圧縮時の圧縮応力が0.03MPa以上であれば、高線速で通液しても圧密化を生じない吸着体が得られやすいため好ましい。また、吸着体の5圧縮時の圧縮応力が1MPa以下、10圧縮時の圧縮応力が3MPa以下、および15圧縮時の圧縮応力が5MPa以下であれば、脆性が改善され、微粒子発生が抑制できるため好ましい。ここで、5圧縮時の圧縮応力とは、吸着体が圧縮されて、初期体積より体積が5減少した時の応力、10圧縮時の圧縮応力とは、吸着体が圧縮されて、初期体積より体積が10減少した時の応力、15圧縮時の圧縮応力とは、吸着体が圧縮されて、初期体積より体積が15減少した時の応力である。初期体積とは、吸着体を含むスラリーに振動を与えながら、吸着体の体積が減少しなくなるまで沈降させて充填した状態の体積である。圧縮時の圧縮応力は、以下の方法で測定しうるものである。1吸着体へ全体積が2倍となるように水を加えてスラリーとし、当該スラリーを内径15mmのガラス製メスシリンダーに投入する。2ガラス製メスシリンダーに振動を与えながら、吸着体の体積が減少しなくなるまで沈降させて充填し、吸着体の体積が約4mLとなるよう吸着体の量を調整する。この時の体積を初期体積とする。3金属製ピストンメスシリンダーの内壁と摩擦を生じず、且つ吸着体が漏れないように加工したものを、20N用ロードセルを装着したオートグラフSHIMADZU社製,EZ-TESTに取り付ける。4吸着体の120volに相当する位置にピストンの底面を合わせる。5気泡が入らないように、試験速度5mm/minでピストンを下降させ、多孔質担体を圧縮して体積を減少させる。6所定の点の圧縮応力を測定する。これらの物性を有する多孔質担体にアフィニティーリガンドを固定化した吸着体は、大スケールで且つ高線速で、目的吸着物質を効率良く吸着することが期待される。本発明の吸着体の、目的物の吸着量は、吸着体1mLあたり1mg以上であることが好ましい。目的物の吸着量が、吸着体1mLあたり1mg以上であれば、効率よく精製が行えるため好ましい。また目的物の吸着量が、吸着体1mLあたり1000mg以下であれば、吸着した目的物を吸着体から溶出しやすいため好ましい。より好ましい吸着体の、目的物の吸着量は、吸着体1mLあたり、5mg以上がより好ましく、10mg以上がさらに好ましく、20mg以上が特に好ましく、30mg以上が最も好ましく、また、500mg以下がより好ましく、300mg以下がさらに好ましく、250mg以下が特に好ましく、200mg以下が最も好ましい。目的物の吸着量は、以下のようにして求めることができる。目的物の吸着量の求め方としては、特に限定は無いが、静的吸着量や動的吸着量によって求めることができる。例えば、静的吸着量を測定する場合は、pH7.4のリン酸バッファーシグマ社製で置換した吸着体0.5mLに対し、70mgの目的吸着物質を35mLのpH7.4のリン酸バッファーシグマ社製に溶解させた溶液を接触させ、25°Cで2時間攪拌した後、上清中の吸着目的物質の減少量を測定することにより求めることができる。また、吸着目的物質の動的吸着量と目的物中にリークしたリガンドの濃度を求める方法の一例を以下に述べる。1溶液作製A液としてpH7.4リン酸バッファーシグマ社製、B液としてpH3.5の35mM酢酸ナトリウム和光純薬工業社製の酢酸、酢酸ナトリウム、RO水で調製、C液として1M酢酸和光純薬工業社製酢酸とRO水で調製、D液として1mg/mLのヒトポリクローナルIgG溶液バクスター社製ガンマガードとA液で調製、E液として6M尿素、F液としてA液に対して0.2volの界面活性剤和光純薬工業社製ポリオキシエチレン20ソルビタンモノラウレートを添加した液、中和液として2Mのトリスヒドロキシメチルアミノメタンシグマ社製トリスヒドロキシメチルアミノメタンとRO水で調製を調製し、各溶液を使用前に脱泡する。2充填と準備カラムクロマトグラフィー用装置として、AKTAexplorer100GEヘルスケアバイオサイエンス社製を用い、直径0.5cm、高さ15cmのカラムに22μmのメッシュを取り付け、本発明の吸着体をそれぞれ3mL入れ、線速400cm/hで20エタノール水溶液和光純薬工業社製エタノールとRO水で調製を1時間通液して充填する。フラクションコレクターに15mlの採取用チューブをセットし、溶出液の採取用チューブについては、あらかじめ中和液を入れておく。3洗浄必要に応じて、F液、B液、A液、C液、E液の順に、各液を線速300cm/hで吸着体の3倍量を通液する。この通液サイクルを任意の回数、繰り返す。4IgG精製A液を線速300cm/hで9mL通液し、次いでD液をUVをモニターしながら、IgGが10破過するまで線速300cm/hで通液する。次いで、A液を線速300cm/hで30mL通液し、B液を線速300cm/hで30mL通液してIgGを溶出させる。次にC液を線速300cm/hで9mL、E液を線速300cm/hで9mL通液する。吸着体の充填終了後からの操作をさらに2回繰り返すことにより、溶出液中のIgG量とIgG中にリークしたリガンドの濃度を求めることができる。本発明の吸着体は、アフィニティークロマトグラフィーを用いたタンパク質などの各種目的物の精製や、非特許文献3に示されるような各種精製方法や、治療用吸着体や医療用着体に利用することができる。精製方法や治療方法には特に限定は無く、非特許文献1、2、3や、その他公知の方法を好適に用いる事ができる。さらに、本発明の精製用吸着体を用いた精製方法は、直径0.5cm以上および高さ3cm以上のカラムを用いることが好ましい。直径が0.5cm以上および高さ3cm以上であれば、精製を効率よく行うことができる。また、精製の精度や効率の観点から、カラムの大きさは直径2000cm以下および高さ5000cm以下であることが好ましい。より好ましいカラムの大きさは直径2cm以上、400cm以下、高さ5cm以上、400cm以下であり、さらに好ましくは直径5cm以上、300cm以下および高さ8cm以上、200cm以下であり、特に好ましくは直径10cm以上、250cm以下および高さ12cm以上100cm以下であり、最も好ましくは直径20cm以上、150cm以下および高さ15cm以上、50cm以下である。本発明の吸着体を用いた治療や精製は、線速10cm/h以上で通液する工程を有することが好ましい。線速10cm/h以上で通液する工程を有していれば、治療や精製を効率よく行うことができるため好ましい。また治療や精製の精度や装置の耐久性の観点から、本発明の吸着体を用いた治療や精製は、線速5000cm/h以下で行うことが好ましい。精製の線速としては、50cm/h以上がより好ましく、100cm/h以上がさらに好ましく、200cm/h以上が特に好ましく、300cm/h以上が最も好ましく、また、3000cm/h以下がより好ましく、1500cm/h以下がさらに好ましく、1000cm/h以下が特に好ましく、750cm/h以下が最も好ましい。以下、本発明の実施例を示すが、本発明はこれら実施例に限定されるものではない。なお、本発明に係る吸着体を製造する際における反応仕込み時の多孔質粒子の体積は、特に記載が無い限りタッピング体積である。タッピング体積は、多孔質粒子とRO水のスラリーを計量容器に投入し、振動を与えながらこれ以上体積が減少しなくなるまで沈降させた状態の体積である。また、官能基含量における多孔質粒子の体積は、特に記載が無い限り、タッピング体積である。なお、各試験において多孔質粒子が足りなくなった場合は、同じ方法で製造して追加した。まず各多孔質粒子の物性の測定条件を示す。試験例1ホルミル基含量測定pH8の0.1Mリン酸バッファーで置換した多孔質粒子4mLと、フェニルヒドラジンを溶解したpH8の0.1Mリン酸バッファー溶液2mLとを接触させ、40°Cで1時間攪拌した。次いで、UV測定により反応液の上清の278nm付近の吸収極大の吸光度を測定し、これにより得られたフェニルヒドラジンの多孔質粒子への吸着量として、ホルミル基含量を見積もった。この時、フェニルヒドラジンの投入量は予想ホルミル基含量の3倍モルとし、フェニルヒドラジンの投入量に対して、多孔質粒子への吸着量が15以下、または45以上であった場合は、フェニルヒドラジンの投入量を見直し、再度測定を行うものとした。試験例2分配係数Kav測定1カラム充填多孔質粒子をRO水に分散させ、1時間脱気した。脱気した多孔質粒子を、線速105cm/hでカラムGEヘルスケアジャパン社製,Tricorn10/300に充填した。その後、pH7.5の溶出液129mLを線速26cm/hでカラムに通液した。2マーカー添加マーカーとして次のものを用いた。BlueDextran2000PharmaciaFIneChemicals社製LowDensityLipoproteinSIGMA社製,MW3,000,000ThyroglobulinSIGMA社製,MW660,000フェリチンSIGMA社製,MW440,000AldolaseSIGMA社製,MW158,000IgGヒト由来SIGMA社製,MW115,000BovineSerumAlbuminWako社製,MW6,700CytochromeCWako社製,MW12,400BacitracinWako社製,MW1,400前記溶出液を線速26cm/hでカラムに通液しながら、上記マーカーをpH7.5のバッファーにて5mg/mLに薄めたものを、各々12μLずつ注入した。なお、マーカーの濃度は都度微調整した。3測定測定器として、DGU-20A3、SCL-10A、SPD-10A、LC-10AD、SIL-20AC、CTO-10ACそれぞれSHIMADZU社製を用い、測定ソフトウェアとして、LCSolutionを用いた。液量測定には50mLメスシリンダーを用いた。マーカー注入と同時にUVモニターおよび液量の測定を開始し、1ブルーデキストランの最初のピークに対応する液量をV0mLとした。2各マーカーのピークに対応する液量をVRmLとした。3カラム内の多孔質粒子のトータルボリュームをVtmLとした。4算出各マーカーの分配係数Kavを次式で算出した。Kav=VR-V0/Vt-V05最大径各マーカーのKavと該分子量の対数をプロットし、直線性を示す部分から下記式の傾きと切片を求めた。Kav=k×Ln分子量b次いで求めた傾きと切片からKavが0の時の分子量、つまり排除限界分子量を求めた。次に中性緩衝液中の球状タンパク質の直径と分子量の下記相関式に排除限界分子量を代入し、求まった値を試料粒子の孔の最大径とした。球状タンパク質の中性緩衝液中の直径Å=2.523×分子量032676平均孔径直線性を示す部分の最大Kav/2に相当する分子量を前記中性緩衝液中の球状タンパク質の直径と分子量の相関式に代入し、求まった値を試料粒子の孔の平均径とした。なお、吸着体の目的吸着物質に対するKavを測定する場合、目的吸着物質が吸着されてしまい、正確な測定ができなくなるおそれがある。よって、吸着体の目的吸着物質に対するKavは、目的吸着物質と近い分子量を有する2種以上のタンパク質のKavを測定し、それらのデータから計算で求めるものとする。例えば、目的吸着物質がIgGの場合、フェリチンとアルブミンのデータからKavを求める。試験例3平均粒子径測定レーザ回折/散乱式粒子径分布測定装置堀場社製LA-950を用いてメジアン径を測定し、平均粒子径とした。試験例4静的結合容量測定pH7.4のリン酸バッファーシグマ社製で置換した吸着体0.5mLに対し、70mgのヒトポリクローナルIgGニチヤク社製ガンマグロブリンニチヤク1500mg/10mL,0.467mLをpH7.4のリン酸バッファーシグマ社製に溶解させて全量を35mLとした溶液を接触させ、25°Cで2時間撹拝した後、上清中のIgGの減少量を測定することにより求めた。試験例5動的結合容量測定1溶液作成以下の溶液を調製した。A液:pH7.4リン酸バッファーシグマ製B液:pH3.5Mの35mM酢酸ナトリウムナカライテスク社製の酢酸、酢酸ナトリウム、RO水で調製C液:1M酢酸ナカライテスク社製の酢酸とRO水で調製D液:1mg/mLのヒトポリクローナルIgG溶液ニチヤク社製ガンマグロブリンニチヤク1500mg/10mLとA液で調製E液:6M尿素関東化学社製の尿素とRO水で調製各溶液は、使用前に脱泡した。2充填、準備カラムクロマトグラフィー用装置として、AKTAexplorer100GEヘルスケアバイオサイエンス社製を用い、直径0.5cm、高さ15cmのカラムに22μmのメッシュを取り付け、本発明の吸着体をそれぞれ3mL入れ、線速450cm/hで20エタノール水溶液和光純薬工業社製エタノールとRO水で調整を1時間通液して充填した。フラクションコレクターに15mlの採取用チューブをセットし、溶出液の採取用チューブについては、あらかじめ中和液を入れておいた。3IgG精製A液を線速300cm/hで9mL通液し、次いでD液を、UVをモニターしながら、IgGが10破過するまで線速300cm/hで通液した。次いで、A液を線速300cm/hで30mL通液し、B液を線速300cm/hで30mL通液してIgGを溶出させた。次にC液を線速300cm/hで9mL,E液を線速300cm/hで9mL通液した。試験例6圧縮応力測定内径15mmのガラス製メスシリンダーに多孔質粒子または吸着体の50volのスラリーを投入した。ガラス製メスシリンダーに振動を与えながら、多孔質粒子または吸着体の体積が減少しなくなるまで沈降させて充填し、多孔質粒子または吸着体の体積が4mLとなるよう多孔質粒子または吸着体量を調整した。この時の体積を初期体積とした。金属製ピストンメスシリンダーの内壁と摩擦を生じず、且つ多孔質粒子または吸着体が溶出しないように加工したものを、20N用ロードセルを装着したオートグラフSHIMADZU社製,EZ-TESTに取り付けた。多孔質粒子または吸着体の120volに相当する位置にピストンの底面を合わせた。気泡が入らないように、試験速度5mm/minでピストンを下降させ、多孔質粒子または吸着体を圧縮して体積を減少させ、任意の点の圧縮応力を測定した。比較例11-エチル-3-メチルイミダゾリウムアセテートシグマアルドリッチ社製,20gに結晶性セルロース2.73gを70°Cにて溶解させ、12.0重量溶液を調製した。このセルロース溶液から15mLを量り取り、ホモジナイザーHSIANGTAI社製,HG-200により4000rpmの速度で攪拌されている中鎖脂肪酸トリグリセリドMCT理研ビタミン社製,アクターM-2,脂肪酸組成:C8が100,85mLに添加した。5分間攪拌してMCT中にセルロース溶液を分散させた。当該分散液を、300rpmの速度で攪拌している25°Cの水へ徐々に添加し、セルロースを固化させた。静置して液相を分離させたところ、上層がMCT、下層が水と1-エチル-3-メチルイミダゾリウムアセテートの二層溶液となった。セルロースは下層に沈降した。セルロースを回収し、メタノールで洗浄した後、水で洗浄した。マイクロスコープキーエンス社製,デジタルマイクロスコープVH-6200で観察したところ、粒子状のセルロースが得られていた。得られた粒子の顕微鏡画像を市販の画像解析処理ソフトMotic社製,moticimagesplusを用いて解析し、平均アスペクト比を測定した。平均アスペクト比は、画像中における粒子の長軸と短軸を測定して各粒子のアスペクト比を算出し、さらにそれらの平均を計算することにより求めた。また、レーザ回折/散乱式粒子径分布測定装置堀場社製LA-950を用いてメジアン径を測定し、平均粒子径とした。その結果、平均粒子径は104.0μm、平均アスペクト比は1.10と、微細で且つ真球に近いセルロース粒子が得られていることが証明された。また、圧縮強度試験機SIMADZU社製,EZ-TESTを用い、圧縮強度を測定することで、セルロース粒子の硬度を評価した。その結果、体積が10圧縮されたとき0.042Mpaの応力を示し、適度な硬度を有していることが明らかとなった。さらに、得られたセルロース粒子の孔内を2-メチル-2-プロパノールで置換し、凍結乾燥後、走査型電子顕微鏡日立製作所社製,S-800,以下SEMと称するにて解析した。その結果、セルロース粒子は図1~4に示したような多孔性の粒子であることが確認された。また、乾燥させたセルロース粒子を粉末X線回折XRD,RigakuMiniFlexII,以下同じにより解析した。結果を図5に示す。図5のとおり、結晶性があることが確認された。比較例2セルロース濃度を10.0重量とする以外は比較例1と同様の条件および方法でセルロース粒子を析出させた。その結果、平均粒子径が121.4μm、平均アスペクト比1.12のセルロース粒子が得られた。また、セルロース体積が10圧縮されたとき0.015Mpaの応力を示した。得られた粒子は、比較例1と同様の多孔質粒子だった。比較例3セルロース濃度を7.0重量とする以外は比較例1と同様の条件および方法でセルロース粒子を析出させた。その結果、平均粒子径が104.0μm、平均アスペクト比1.10のセルロース粒子が得られた。また、セルロース体積が10圧縮されたとき0.004Mpaの応力を示した。得られた粒子は、比較例1と同様の多孔質粒子だった。図5に比較例1から比較例3のセルロース粒子をXRDで解析した結果を示すが、いずれも結晶性が確認できるので、水より得られたセルロース粒子は結晶性をもつと判断できる。実施例1セルロース濃度を12.0重量、セルロース非溶解性液体をメタノール:水=7:3の混合溶媒とした以外は比較例1と同様の条件および方法でセルロース粒子を析出させた。セルロースを析出させた後、静置したところ、下層がMCT、上層がメタノールと水と1-エチル-3-メチルイミダゾリウムアセテートとMCTの二層溶液となった。析出したセルロースは上層に沈んでいた。セルロースを回収したところ、平均粒子径98.5μm、平均アスペクト比1.07の真球状セルロース粒子であった。また、図6~9のSEM写真のとおり、当該粒子は多孔質なものである。実施例2セルロース濃度を12.0重量、セルロース非溶解性液体をメタノール:水=9:1の混合溶媒とした以外は比較例1と同様の条件および方法でセルロース粒子を析出させた。セルロースを析出させた後、静置したところ、下層がMCT、上層がメタノールと水と1-エチル-3-メチルイミダゾリウムアセテートとMCTの二層液体となった。析出したセルロースは上層に沈んでいた。セルロースを回収したところ、平均粒子径97.3μm、平均アスペクト比1.07の真球状セルロース粒子であった。また、図10~13のSEM写真のとおり、当該粒子は多孔質なものである。実施例3セルロース非溶解性液体をメタノールとした以外は比較例1と同様の条件および方法でセルロース粒子を析出させた。メタノールにセルロース液滴分散液を添加し、セルロースを析出させた後、静置したところ、下層がMCT、上層がメタノールと1-エチル-3-メチルイミダゾリウムアセテートとMCTの二層溶液となった。析出したセルロースは上層に沈んでいた。セルロースを回収したところ、平均粒子径60.4μm、平均アスペクト比1.07の真球状セルロース粒子であった。セルロース体積が10圧縮されたとき0.053Mpaの応力を示した。また、図14~17のSEM写真のとおり、当該粒子は多孔質なものである。凍結乾燥後、XRDで解析したところ、得られたセルロース粒子はアモルファスであった。図18に比較例1および実施例1から実施例3のセルロース粒子をXRDで解析した結果を示すが、凝固液として水を用いた比較例1のセルロース粒子以外はアモルファスであると判断できる。使用溶媒を回収し、エバポレーターでメタノールを蒸発させたところ、1-エチル-3-メチルイミダゾリウムアセテートとMCTが分離した。MCTを取り除き、1-エチル-3-メチルイミダゾリウムアセテートの体積と重量を測定した結果、1-エチル-3-メチルイミダゾリウムアセテートの濃度は98と判断できた。このように高純度のイオン液体は、十分に再利用することができる。実施例4セルロース濃度を10.0重量とする以外は実施例3と同様の条件および方法でセルロースを析出させた。その結果、平均粒子径54.23μm、平均アスペクト比1.07の真球状セルロース粒子が得られた。セルロース体積が10圧縮されたとき0.027Mpaの応力を示した。実施例5セルロース濃度を7.0重量とする以外は実施例3と同様の条件および方法でセルロースを析出させた。その結果、平均粒子径60.36μm、平均アスペクト比1.07の真球状セルロース粒子が得られた。図19に実施例3から実施例5のセルロース粒子をXRDで解析した結果を示すが、いずれもアモルファスのセルロース粒子であった。実施例6セルロース濃度を12.0重量とし、セルロース非溶解性液体をエタノールとした以外は比較例1と同様の条件および方法でセルロース粒子を析出させた。その結果、平均粒子径87.44μm、平均アスペクト比1.07の真球状セルロース粒子が得られた。なお、エタノールを用いた場合は、水やメタノールを用いた場合とは異なり、溶液は二層に分離しなかった。セルロース体積が10圧縮されたとき0.026Mpaの応力を示した。凍結乾燥後、XRDで解析したところ、得られたセルロース粒子はアモルファスであった。図5と図19より、セルロース粒子の結晶性はセルロース溶液濃度によらず、セルロース非溶解性液体にアルコール類を用いた場合はアモルファスとなり、水を用いた場合は結晶性を示すことが分かった。また、セルロース粒子の結晶性はセルロース非溶解性液体の種類により制御可能であった。実施例71-エチル-3-メチルイミダゾリウムアセテート52.18gに結晶性セルロース5.80gを70°Cにて溶解させ、10.0重量溶液を調製した。このセルロース溶液から50mLを量り取り、内径113mmの円筒型容器中、翼径70mmのH型翼にて100rpmの速度で攪拌されている950mLのMCTに添加し、分散させた。分散液の溶液温度を40°Cとし、1L/minの速度で静止型ミキサーフジキン社製,分散君1.5Aを通し、セルロース非溶解性液体であるメタノール:水=9:1の混合溶媒に添加し、セルロースを析出させた。メタノール:水=9:1の混合溶媒は、内径143.5mmの円筒型容器中、翼径64.2mmのフラットタービン翼にて300rpmの速度で攪拌し、溶液量は2000mL、溶液温度は25°Cとした。セルロースを回収し、メタノールで洗浄した後、水で洗浄した。比較例1と同様にマイクロスコープで観察したところ、平均粒子径86.3μm、平均アスペクト比1.07のセルロース粒子が得られていた。また、図20~21のSEM写真のとおり、当該粒子は多孔質なものである。実施例81-エチル-3-メチルイミダゾリウムアセテートシグマアルドリッチ社20gにメタノール:水=7:3の混合溶液を2.22g加えた溶液に、結晶性セルロースを2.73g溶解した。当該溶液のセルロース濃度は、10.9重量である。このセルロース溶液から15mLを量り取り、400rpmの速度で攪拌されている50°Cの中鎖脂肪酸トリグリセリドMCT製品名:アクターM-2、理研ビタミン株、脂肪酸組成はC8が10085mLに添加した。30分間攪拌し、MCT中にセルロース溶液を分散させた後、300rpmで攪拌している50°Cのメタノール:水=7:3の混合溶媒400mLにセルロース液滴分散液を添加し、セルロースを固化させた。30分攪拌した後セルロースを回収し、セルロース粒子をエタノールで洗浄した後、水で洗浄した。次いで125μmのメッシュを用いて分級を行い、大きい粒子径のものを除去した。次いで53μmのメッシュを用いて分級を行い、小さい粒子径のものを除去した。得られた回収したセルロース粒子の一部を2-メチル-2-プロパノールで置換し、凍結乾燥後、走査型電子顕微鏡日立製作所S-4800、以下SEMと称するにて解析した。その結果、セルロース粒子は図22に示したような多孔質の粒子であることが確認された。取得したセルロース多孔質粒子の細孔径を上述のKav測定法にて求めた結果、本セルロース多孔質粒子の最大細孔径は725Å、平均径は271Åであった。また傾きkは-0.153であった。IgGを用いて測定したKavは0.86であった。また、排除限界分子量は3.5×107であった。乾燥させたセルロース粒子を粉末X線回折XRD、RigakuMiniFlexII、以下同じにより解析したところ、アモルファスのパターンを示した。平均粒子径は94μmであった。実施例9MCT温度を25°C、メタノール:水=7:3の混合溶媒の温度を25°Cとする以外は実施例8と同様の条件でセルロース粒子を得た。SEMにて解析した結果、得られたセルロース粒子は図23に示したような多孔性の粒子であることが確認された。取得したセルロース多孔質粒子の細孔径を上述のKav測定法にて求めた結果、本セルロース多孔質粒子の最大細孔径は350Å、平均径は194Åであった。また傾きkは-0.266であった。IgGを用いて測定したKavは0.93であった。また、排除限界分子量は3.8×106であった。平均粒子径は88μmであった。実施例10MCT温度を10°C、メタノール:水=7:3の混合溶媒の温度を10°Cとする以外は実施例8と同様の条件でセルロース粒子を得た。SEMにて解析した結果、得られたセルロース粒子は図24に示したような多孔性の粒子であることが確認された。平均粒子径は83μmであった。図25に実施例8~10のセルロース粒子をXRDで解析した結果を示すが、いずれもアモルファスのセルロース粒子であった。実施例111-エチル-3-メチルイミダゾリウムアセテートシグマアルドリッチ社20gにメタノール:水=6:4の混合溶液を2.22g加えたことと、セルロース液滴分散液をメタノール:水=6:4のセルロース非溶解性液体400mLに添加した以外は実施例9と同様の条件でセルロース粒子を得た。SEMにて解析した結果、得られたセルロース粒子は実施例9と同様の多孔性の粒子であることが確認された。取得したセルロース多孔質粒子の細孔径を上述のKav測定法にて求めた結果、本セルロース多孔質粒子の最大細孔径は362Å、平均径は201Åであった。また傾きkは-0.222であった。IgGを用いて測定したKavは0.80であった。また、排除限界分子量は4.2×106であった。XRDで解析したところ、得られたセルロース粒子はアモルファスであった。平均粒子径は90μmであった。実施例121-エチル-3-メチルイミダゾリウムアセテートシグマアルドリッチ社20gにメタノール:水=9:1の混合溶液を2.22g加えたことと、セルロース液滴分散液をメタノール:水=9:1のセルロース非溶解性液体400mLに添加した以外は実施例9と同様の条件でセルロース粒子を得た。SEMにて解析した結果、得られたセルロース粒子は実施例9と同様の多孔性の粒子であることが確認された。取得したセルロース多孔質粒子の細孔径を上述のKav測定法にて求めた結果、本セルロース多孔質粒子の最大細孔径は261Å、平均径は184Åと求められた。また傾きkは-0.380であった。IgGを用いて測定したKavは0.86であった。また、排除限界分子量は1.5×106であった。XRDで解析したところ、得られたセルロース粒子はアモルファスであった。平均粒子径は90μmであった。実施例131-エチル-3-メチルイミダゾリウムアセテートシグマアルドリッチ社20gにメタノール:水=7:3の混合溶液を2.22g加えた溶液に、結晶性セルロースを1.93g溶解させ、セルロース濃度を8.0重量とした以外は実施例9と同様の条件でセルロース粒子を得た。SEMにて解析した結果、得られたセルロース粒子は実施例8と同様の多孔性の粒子であることが確認された。取得したセルロース多孔質粒子の細孔径を上述のKav測定法にて求めた結果、本セルロース多孔質粒子の最大細孔径は1020Å、平均径は306Åと求められた。また傾きkは-0.117であった。IgGを用いて測定したKavは0.79であった。また、排除限界分子量は1.0×108であった。XRDで解析したところ、得られたセルロース粒子はアモルファスであった。平均粒子径は94μmであった。実施例141-エチル-3-メチルイミダゾリウムアセテート18.0gに結晶性セルロースを2.00g溶解させ、セルロース濃度を10.0重量とした。このセルロース溶液から15mLを量り取り、400rpmの速度で攪拌されている25°CのMCT85mLに添加した。30分間攪拌し、MCT中にセルロース溶液を分散させた後、300rpmで攪拌している25°Cのメタノール:水=7:3の混合溶媒400mLにセルロース液滴分散液を添加し、セルロースを固化させた。30分攪拌した後セルロースを回収し、セルロース粒子をエタノールで洗浄した後、水で洗浄した。取得したセルロース多孔質粒子の細孔径を上述のKav測定法にて求めた結果、本セルロース多孔質粒子の最大細孔径は1340Å、平均径は353Åであった。また、傾きkは-0.102であった。IgGを用いて測定したKavは0.78であった。また、排除限界分子量は2.3×108であった。実施例15架橋多孔質粒子の製造実施例8にて得られたセルロース多孔質粒子から、目開き125μmの篩を用いて粗大多孔質粒子を除去し、次いで、目開き53μmの篩を用いて過小多孔質粒子を除去した。かかる分級操作後の11.0mLのセルロース多孔質粒子AにRO水を加えて、16.5mLとし、これを50mLの遠沈管に移した。ここに4NNaOHナカライテスク社製とRO水で調製を3.86mL加え、ハイブリダイゼーションオーブン東京理化学機器製MHS-2000中にて、40度に昇温させた。ここに架橋剤としてグリセロールポリグリシジルエーテルを含有するデナコールEX-314ナガセケムテック社製を1.77g投入し、40°Cで4時間攪拌した。反応終了後、グラスフィルターシバタ製11GP100上で吸引濾過しながら、多孔性粒子の20倍体積量以上のRO水で洗浄し、架橋多孔質粒子を得た。得られた架橋多孔質粒子にRO水を加えて、全量を架橋多孔質粒子の10倍体積量とし、アルミ箔2枚で封をして、オートクレーブトミー社製、高圧滅菌器ES-315を用いて、120°Cで1時間加温した。室温まで放冷した後、グラスフィルターシバタ製11GP100上で多孔質粒子の5倍体積量以上のRO水で洗浄し、エポキシ基がグリセリル基に変化したオートクレーブ済みの多孔質粒子Bを得た。次いで、このオートクレーブ済みの多孔質粒子B10mLにRO水を加えて16.5mLとし、これを50mLの遠沈管に移した。これに4N-NaOHナカライテスク社製とRO水で調製を3.86mL加え、ハイブリダイゼーションオーブン東京理化学機器製MHS-2000中で40°Cに昇温させた。ここにデナコールEX-314ナガセケムテック社製を1.77g投入し40度で4時間攪拌した。反応終了後、グラスフィルターシバタ製11GP100上で吸引濾過しながら、多孔質粒子の20倍体積量以上のRO水で洗浄し、架橋多孔質粒子を得た。得られた架橋多孔質粒子にRO水を加えて、全量を架橋多孔質粒子の10倍体積量とし、ガラス製三角フラスコ300mLに入れ、アルミ箔2枚で封をして、オートクレーブトミー社製、高圧滅菌器ES-315を用いて120°Cで60分間加温した。室温まで放冷した後、グラスフィルターシバタ製11GP100上で多孔質粒子の5倍体積量以上のRO水で洗浄し、オートクレーブ済みの多孔質粒子Cを得た。さらに、このオートクレーブ済みの多孔質粒子C10.5mLにRO水を加えて15.8mLとし、これを50mLの遠沈管に移した。これに4N-NaOHナカライテスク社製とRO水で調製を2.68mL加え、ハイブリダイゼーションオーブン東京理化学機器製MHS-2000中で40°Cに昇温させた。ここにデナコールEX-314ナガセケムテック社製を1.69g投入し40°Cで4時間攪拌した。反応終了後、グラスフィルターシバタ製11GP100上で吸引濾過しながら、多孔質粒子の20倍体積量以上のRO水で洗浄し、架橋多孔質粒子を得た。得られた架橋多孔質粒子にRO水を加えて、全量を架橋多孔質粒子の10倍体積量とし、ガラス製三角フラスコ300mLに入れ、アルミ箔2枚で封をして、オートクレーブトミー社製、高圧滅菌器ES-315を用いて120°Cで60分間加温した。室温まで放冷した後、グラスフィルターシバタ製11GP100上で多孔質粒子の5倍体積量以上のRO水で洗浄し、架橋多孔質粒子Dを得た。実施例16吸着体の製造実施例15にて得られた架橋多孔質粒子D、11.0mLに、RO水を加えて全量を17.0mLとし、50mLの遠沈管に入れ、これを25°Cにてミックスローターアズワン社製ミックスローターMR-3上に取り付けた後、攪拌した。次に、過ヨウ素酸ナトリウム和光純薬工業社製をRO水に溶解させた、8.64mg/mLの過ヨウ素酸ナトリウム水溶液を6.0mL作成し、先程多孔質粒子Dを入れた遠沈管に加え、25度で1時間攪拌した。反応後、グラスフィルターシバタ製11GP100上で、濾液の電気伝導度が1μS/cm以下となるまでRO水で洗浄し、ホルミル基架橋多孔質担体Eを得た。洗浄濾液の電気伝導度は、導電率計EUTECHINSTRUMENTS社製、ECTester10Pureで測定した。得られた多孔質粒子Eのホルミル基含量を前述の方法で測定した結果、ホルミル基含量は多孔質粒子E1mLあたり20.17μmolであった。得られたホルミル基架橋多孔質担体E9.0mLをグラスフィルターシバタ製11GP100でpH11の0.5Mクエン酸三ナトリウム関東化学社製0.15M食塩関東化学社製バッファー30mLで置換した。pH8の0.5Mクエン酸ナトリウム0.15M食塩バッファーを用い、置換後のホルミル基含有多孔質担体を、遠沈管に入れ、総体積量14.0mLとなるように液量を調整した。ここに、国際公開特許公報WO2006/004067に記載の方法で作製されたプロテインAの濃度が、67.58mg/mLのプロテインA含有溶液カネカ社製PNXL30を5.327g加えた後、6°Cにて、0.08NNaOHナカライテスク社製とRO水で調製を用いて、pHを12に調整した後、6度にて23時間、ミックスローターアズワン社製ミックスローターMR-3を用い、攪拌させながら反応させた。23時間反応後、反応液のpHが5.0になるように2.4Nクエン酸関東化学社製クエン酸とRO水で調製を用いてpH調整した後、6°Cで4時間、ミックスローターアズワン社製ミックスローターMR-3を用いて、攪拌させた。引き続き、5.5ジメチルアミンボランDMAB水溶液キシダ化学社製ジメチルアミンボランとRO水で調整を0.39mL加えて、6°Cで1時間攪拌した後、反応温度を25°Cに上昇させ、25°Cで18時間、ミックスローターアズワン社製ミックスローターMR-3を用いて攪拌しながら反応させた。反応後、反応液の278nm付近の吸収極大のUV吸光度を測定した結果、アフィニティーリガンドであるプロテインAの導入量が、多孔質担体1mLあたり、28.93mgであることがわかった。反応後の多孔質担体をグラスフィルターシバタ製11GP100上で、多孔質担体の3倍体積量のRO水で洗浄した。次いで、3倍体積量の0.1Nクエン酸一水和物関東化学社製クエン酸一水和物とRO水で調製を加え、当該多孔質担体に0.1Nクエン酸一水和物を加えて全量を30mL以上とし、遠沈管に入れ、25°Cで30分間攪拌しながら、酸洗浄を行った。酸洗浄後、多孔質担体をグラスフィルターシバタ製11GP100上で、多孔質担体の3倍体積量のRO水で洗浄し、次いで、3倍体積量の0.05M水酸化ナトリウム1M硫酸ナトリウム水溶液ナカライテスク製水酸化ナトリウム、関東化学社製硫酸ナトリウム及びRO水で調製を加えた。次に、当該多孔質担体に、0.05M水酸化ナトリウム1M硫酸ナトリウム水溶液を加えて全量を30mL以上とし、遠沈管に入れ、室温で30分間攪拌しながら、アルカリ洗浄を行った。アルカリ洗浄後、多孔質担体をグラスフィルターシバタ製11GP100上で、多孔質担体の20倍体積量のRO水で洗浄した。次に、多孔質担体の3倍量の0.1Nクエン酸一水和物関東化学社製クエン酸RO水で調製を加え、濾液が中性になっていることを確認した後、RO水を用いて、洗浄濾液の電導度が1μS/cm以下になるまで洗浄し、目的とするプロテインAを固定化した吸着体Fを得た。洗浄濾液の電導度は導電率計EUTECHINSTRUMENTS社製、ECTester10Pureで測定した。得られた吸着体の目的物としてヒトポリクローナルIgGニチヤク製、ガンマグロブリンニチヤク1500mg/10mLを選択し、静的結合容量を測定した結果、83.9mg/mL吸着体であった。また動的結合容量を求めた結果、線速300cm/hでのIgG吸着容量5ダイナミックバインディングキャパシティーは、29.8mg/mL吸着体であった。また線速150cm/hでのIgG吸着容量5ダイナミックバインディングキャパシティーは、36.0mg/mL吸着体であった。実施例17吸着体の製造実施例9にて得られたセルロース多孔性粒子を用いた以外は、実施例15~16に記載された方法と同様の方法にて、プロテインAを固定化した吸着体を得た。得られた吸着体の静的結合容量を測定した結果、85.9mg/mL吸着体であった。また、動的吸着量を求めた結果、線速300cm/hでのIgG動的吸着量5ダイナミックバインディングキャパシティーは、6.9mg/mL吸着体であった。実施例18実施例10にて得られたセルロース多孔性粒子を用いた以外は、実施例15~16に記載された方法と同様の方法にて、プロテインAを固定化した吸着体を得た。得られた吸着体の静的結合容量を測定した結果、49.3mg/mL吸着体であった。また、動的吸着量を求めた結果、線速300cm/hでのIgG動的吸着量5ダイナミックバインディングキャパシティーは、1.6mg/mL吸着体であった。実施例19実施例11にて得られたセルロース多孔性粒子を用いた以外は、実施例15~16に記載された方法と同様の方法にて、プロテインAを固定化した吸着体を得た。得られた吸着体の静的結合容量を測定した結果、79.3mg/mL吸着体であった。また、動的吸着量を求めた結果、線速300cm/hでのIgG動的吸着量5ダイナミックバインディングキャパシティーは、9.3mg/mL吸着体であった。実施例20実施例12にて得られたセルロース多孔性粒子を用い、実施例15~16に記載された方法と同様の方法にて、プロテインAを固定化した吸着体を得た。得られた吸着体の静的結合容量を測定した結果、58.9mg/mL吸着体であった。また、動的吸着量を求めた結果、線速300cm/hでのIgG動的吸着量5ダイナミックバインディングキャパシティーは、1.6mg/mL吸着体であった。実施例21実施例13にて得られたセルロース多孔性粒子を用い、実施例15~16に記載された方法と同様の方法にて、プロテインAを固定化した吸着体を得た。得られた吸着体の静的結合容量を測定した結果、83.9mg/mL吸着体であった。また、動的吸着量を求めた結果、線速300cm/hでのIgG動的吸着量5ダイナミックバインディングキャパシティーは、12.8mg/mLであった。"