"Bacillus属に属する微生物、Ureibacillus属に属する微生物、及びBrevibacillus属に属する微生物を含む菌床に処理対象物を添加混合し、処理対象物中に含まれる有機物を該微生物により分解することから成る、処理対象物を処理する方法。Bacillus属に属する微生物、Ureibacillus属に属する微生物、及びBrevibacillus属に属する微生物を含む菌床に処理対象物を添加混合した後、静置しておくことから成る、請求項1記載の方法。処理対象物が下水汚泥である、請求項1又は2記載の方法。Bacillus属に属する微生物、Ureibacillus属に属する微生物、及びBrevibacillus属に属する微生物を含む菌床を処理対象物に添加混合し、該菌床内の微生物による発酵に伴い発生する熱によって、該処理対象物の水分含量を減少させる方法。処理対象物がバイオマスである、請求項4記載の方法。バイオマスが微細藻の培養物である、請求項5記載の方法。Bacillus属に属する微生物がBacilluscoagulans若しくはBacilluslicheniformis、及び/又は、Ureibacillus属に属する微生物がUreibacillussuwonensis若しくはこれに近縁の種、及び/又は、Brevibacillus属に属する微生物がBrevibacillusthermoruberである、請求項1~6のいずれか一項に記載の方法。菌床が更に、Tepidimicrobium属に属する微生物及び/又はPelotomaculum属に属する微生物を含む、請求項7記載の方法。処理中における菌床と添加された処理対象物との容積比が10:1~60:1である、請求項1~8のいずれか一項に記載の方法。処理対象物を複数回に分けて1~数日毎に菌床に添加混合する、請求項1~9のいずれか一項に記載の方法。処理対象物の分解処理中における、菌床と処理対象物との混合物の含水率が50~75重量である、請求項1~10のいずれか一項に記載の方法。処理対象物の分解処理中における、菌床と処理対象物との混合物の温度が25~75°C表面から30cmの深さで測定である、請求項1~11のいずれか一項に記載の方法。処理対象物の分解処理中における、菌床と処理対象物との混合物のpHが5.5~9.0である、請求項1~12のいずれか一項に記載の方法。特許文献1には、有機物質及び固形性成分を含む被処理水を最初沈殿池にて固形性成分を沈殿分離するとともに、活性汚泥処理装置で生物処理した後、沈殿池で固液分離を行なう活性汚泥処理方法において、前記活性汚泥処理装置に流入させる被処理水中の生物化学的酸素要求量のうち、該被処理水中の固形性成分に由来する生物化学的酸素要求量が、前記被処理水中の全生物化学的酸素要求量に対して60以上となる状態で、被処理水を前記活性汚泥処理装置2へ流入させることを特徴とする活性汚泥処理方法が記載されている。特許文献2には、配合菌数の割合が好気性菌群55と嫌気性菌群45とよりなる有効微生物群をオカラに混合し、40°C~200°Cの温度にて24時間~72時間一次発酵させ、更に、これに配合菌数の割合が好気性菌群55と嫌気性菌群45とよりなる有効微生物群を混合し、40°C~200°Cの温度にて24時間~48時間二次発酵させることにより下水汚泥処理用の発酵資材を製造し、処理すべき下水汚泥1000重量部を発酵槽内に投入し、これに水分調整材を加えて含水率を45~55となし、前記発酵資材1~2重量部を加えて混合し、続いて、発酵槽内の温度を60°C~200°Cに加温し、発酵槽内に空気を注入し、発酵槽内を連続的に攪拌することにより下水汚泥を発酵処理することを特徴とする下水汚泥の処理方法が記載されている。特許文献3には、排水を、管渠と中継ポンプ場とを介して下水処理場に送って生物処理する下水処理方法であって、前記管渠内に前記排水中の有機物を分解する機能を有する微生物を含む微生物製剤を前記中継ポンプ場から投入し、前記中継ポンプ場から前記下水処理場までの前記管渠内において、前記微生物製剤から生じた微生物により、前記有機物の少なくとも一部を分解することを特徴とする下水処理方法が記載されている。前記微生物の例として、グラム陰性菌、又は、グラム陽性菌とグラム陰性菌とを含んだ固体微生物製剤が記載され、好適例として、バチルス属特に、バチルストヨイ菌が挙げられている。特許文献4には、下水処理、し尿処理、食品加工工程によって生じる残渣処理などを、微生物による生物処理を行い、生物処理の後に汚泥の脱水乾燥処理を行う汚泥処理方法であって、脱水乾燥処理を行う前に、微生物を死滅させる微生物死滅処理を行うことを特徴とする汚泥処理方法が記載されている。本発明者は、特定の微生物の組み合わせからなる菌床を終末処理場から排出される下水汚泥、更には、食品工場等の産業現場から排出される残渣及び一般家庭から排出される生ごみ等に添加混合することによって、簡便で、且つ、極めて高い分解率でこれらを分解消滅処理することが可能であることを見出し、本発明に至った。更に、上記菌床内の微生物による発酵に伴い発生する熱によって、この菌床を添加混合した対象物組成物の水分含量が有意に減少させることが可能であることを見出し本発明を完成した。本発明は、Bacillus属に属する微生物、Ureibacillus属に属する微生物、及びBrevibacillus属に属する微生物を含む菌床に下水汚泥等の処理対象物を添加混合し、該処理対象物中に含まれる有機物を該微生物により分解することから成る、下水汚泥等の処理方法に係るものである。更に、本発明は、上記菌床を処理対象物組成物添加混合し、該菌床内の微生物による発酵に伴い発生する熱によって、該対象物の水分含量を減少させる方法にも係るものである。本発明方法によれば、極めて簡便な操作によって、下水汚泥などの処理対象物中に含まれる有機物のほぼ100が分解処理されることが実証された。更に、処理対象物中の水分含有率を有意に減少することが出来、処理後の水の蒸発処理に必要とされる化石燃料を削減することにも効果がある。本発明方法によって処理することができる処理対象物の代表例として、下水汚泥並びに食品工場等の産業現場から排出される残渣及び一般家庭から排出される生ごみ等の微生物のより分解可能な有機物を含有する各種の廃棄物排出物を上げることが出来る。下水汚泥は、例えば、下水の終末末処理場等から排出されるものであり、通常、80~90重量程度の水分の他に各種の分解可能な有機物を含んでおり、pHは7~9程度の範囲である。又、本発明方法における菌床内の微生物による発酵に伴い発生する熱によって、処理対象物の水分含量を顕著に減少させることが出来る。従って、この方法における処理対象物としては、例えば、天然資源天然物、バイオマス及び微細藻の各種生物の培養物等の水分含量が多い例えば、50重量以上、50重量~98重量ものを挙げることが出来る。微細藻類マイクロアルジェ:microalgaeは単細胞生物であり、別名、植物プランクトンとも呼ばれる。葉緑素クロロフィル;Chlorophyllを持ち、光合成によって大気中の二酸化炭素CO2を固定化し酸素O2を産生する。現在、海洋のみならず淡水系湖、池、川にも繁殖し、その種類は10万種類におよぶ。代表的な種として、例えば、クロレラ、スピルリナ、デュナリエラ及びユーグレナ等を挙げることが出来る。微細藻は食品との競合が無く、経済的に実施可能なバイオマスとして、近年、急速に注目されている。微細藻類の増殖生長のためには、基本的に二酸化炭素、ミネラルおよび光を要求し、デンプンを必要としない。これらの微細藻類を培養することにより、バイオ燃料を調達する方法が考えられている。微細藻類から得られるバイオ燃料は化学構造上ディーゼル油に類似しているので、製油施設や貯蔵施設などのインフラは既存のディーゼルのものが流用できると考えられる。このような微細藻類から作られるバイオ燃料は、植物油やセルロース原料から作られるバイオ燃料と区別するために、最近ではphotosyntheticbiofuels光合成バイオ燃料あるいはalgalbiofuels藻類由来バイオ燃料とも呼ばれている。或いは、培養した微細藻類自体を燃料資材として火力発電等に活用する技術も開発が進められている。元々、数億年前の海洋に繁栄した微細藻類が産生した油脂成分が海底に蓄積されたものを石油として利用しているわけである。微細藻等は水溶系で培養されるために、これらの培養物に水分含量は非常に高い。従って、これら培養物を上記のバイオ燃料又は燃料資源として利用する場合には、それらの製造工程において、例えば、微細藻等が産生する炭化水素などの有効成分の抽出工程等の前に、培養物の水分含量を減少させることが必要となる。本発明方法によれば、菌床内の微生物による発酵に伴い発生する熱によってこのような製造工程において培養物の水分含量を減少させることが可能となる。この場合に、微生物は菌床に含まれている各種成分を栄養源として利用して発酵することができるので、処理対象物自体は微生物によって栄養源として利用される必要はない。従って、本発明方法において添加する菌床の量を適宜調整することによって、微細藻等に含まれている有効成分の分解消失を実質的に抑えることが可能である。その結果、本発明方法によって、微細藻等のバイオ燃料又は燃料資源としての有用性が損なわれることはない。本発明に係る方法において使用する菌床には、以下の実施例に示すような、細菌分離で得られたコロニー検体の簡易形態観察及び16SrDNAの部分塩基配列解析、並びに、検体に含まれる微生物群集を対象としたPCRDGGE及びRTPCRDGGEによって、Bacilluscoagulans及びBacilluslicheniformis等のBacillus属に属する微生物、Ureibacillussuwonensis若しくはこれに近縁の種等のUreibacillus属に属する微生物、及び、Brevibacillusthermoruber等のBrevibacillus属に属する微生物が含まれていることを特徴とする。これらのいずれも常在菌で、バイオセーフティレベルはレベル1で、ヒトに疾病を起こし、或いは動物に獣医学的に重要な疾患を起こす可能性のないもの一日本細菌学会バイオセーフティ指針と判定された。菌床は更に、Tepidimicrobium属に属する微生物及び/又はPelotomaculum属に属する微生物を含むこともある。尚、菌床は、例えば、本発明方法を実施する場所周辺で採取した土壌に、菜種油搾り滓、木炭、米ぬか、バーク、バカス、糖廃密、及び、干草等の適当な資材、更に、必要に応じて、戻し菌床に水分調整用水として、例えば、上水道水、湧水又は海水等の天然水を適宜加えて調製することが出来る。更に、菌床の分解処理能力が低下したような場合には、上記の資材を適宜、添加してその能力を回復されることができる。尚、本発明方法で使用する菌床には、その作製に使用した土壌等に由来する、その他の微生物が含まれていても良い。又、菌床に含まれる上記の各種微生物の含有割合はその作製に使用した土壌の種類等の各種条件によって変動し、特に制限はない。処理中における菌床と添加された処理対象物との容積比は、方法の目的、処理対象物の種類水分含量等に応じて、当業者が適切な範囲を選択し、維持することが出来る。例えば、好適範囲として、処理中における菌床と添加された処理対象物との容積比が10:1~60:1、特に、45:1~55:1を挙げることが出来る。本発明方法の目的、処理対象物の種類水分含量等に応じて、菌床と添加された処理対象物との容積比が上記の範囲となるように、通常、下水汚泥を複数回に分けて、適当な間隔、例えば、1日~数日毎に菌床に添加し、ショベルローダー等の適当な手段を用いて菌床と良く混和混合して、その間は静置しておくことが出来る。或いは、当業者に公知の任意の攪拌装置を利用して、本発明方法の実施期間中、菌床と処理対象物とを常時、攪拌混合することも可能である。処理対象物及び菌床の種類、並びに外部環境等にもよるが、通常、本発明方法における菌床と処理対象物との混合物の含水率は50重量以上、例えば、50重量~75重量程度、菌床と処理対象物との混合物の温度品温は25~75°C表面から30cmの深さで測定、pHは5.5~9.0である。尚、本発明方法において、微生物による発酵作用によって排出される発酵臭や嫌気状態で発生するアンモニア等に対する防臭対策は特に必要としないが、消臭が必要な場合は適当な消臭剤例えば、プロバイオテイクスウオーター:株カナガワファニチュア製:乳酸菌、バチルス菌及び酵母菌を含むプロを菌床や床面に散布すると消臭できる。以下の実施例を参照しつつ、本発明を詳述する。尚、実施例は本発明の一態様であり、本発明の技術的範囲は実施例に記載に限定されるものでない。実証試験1.実験方法有橡性廃棄物分解菌群を橡息させた菌床株1704m3を用意し、それを852m3に二分割し、その菌床に奄美市の下水汚泥015m3日を1日おきに投入し、ショベルローダーにて菌床と良く混和した後、48時間静置し、菌床の品温、含水率、pHを計測し、菌床の消化消滅処理状況を観測した。実験の前後で菌床の菌叢解析と菌床成分分析を行い、その相違も検証した。2.実験場所鹿児島県奄美市名瀬仲勝482番地8奄美市営亀作団地鉄筋倉庫内3.試料下水汚泥提供者鹿児島県奄美市名瀬長浜523名瀬終末処理場4.検査機関菌床成分分析:財団法人千葉県環境財団千葉県知事登録519号千葉県千葉市中央区中央港1111電話0482462078証明書番号BA21141号BA21491号菌叢解析:株式会社テクノスルガラボ静岡県静岡市清水区長崎330番電話05434962115.実験期間と内容期間平成21年8月20日~10月31日8月20日~25日:土着菌採取8月21日:菌床覚醒戻し菌床2m3、木炭025m3、菜種油絞り滓025m3、米ぬか005m3、プロバイオテイクスウオーター:株カナガワファニチュア製002m3、糖廃蜜002m3、水002m3、を使用して菌床を二組用意して覚醒作業を行った。8月25日:菌床大量培養覚醒された菌床255m3、戻し菌床3m3、菜種油絞り滓05m3、木炭025m3、バーク2m3、焼酎廃液002m3、バカス干草、PW002m3、海水002m3、水07m3俺美市大熊、及び、土着菌001m3を混合して、二組の菌床を大量培養した。9月1日:実験開始菌床をA及びBの二組に分け、菌床Aに下水汚泥015m3投入した後、ローダーにて混和後、明後日の午前10時48時間後まで静置した。翌日2日は菌床Bに投入し、明々後日の午前10時まで静置した。以降、この操作を交互に繰り返した。10月7日:台風18号の影響で作業中断し、試験期間を1日延長した。10月21日:菌床Bに下水汚泥投入して終了した。累計でA及びB双方に375m3両方の合計75m3を投入したことになる。10月22日:28日まで菌床をクールダウンさせた。10月28日:菌床容積汁測、15735m3L0Iにて計量したところ水分481、粗灰分244及び有機物272となっていた。10月31日:実証試験終了有機物分解率:以下の表1に示すように、上記の分解処理によって、消化消滅処理のエネルギー源となる有機物は下水汚泥に含まれる有機物だけでは不足し、菌床の有機物も10674kgも利用して7500kgの下水汚泥を処理したことがわかる。更に、微生物による下水汚泥の分解処理に伴い、下水汚泥に含まれていた水分含有率831が処理最終の菌床の水分含有率481まで減少した。菌床量の測定方法菌床下水汚泥から四分法により試料を採取。1lの計量カップで、l当たりの質量を計測しその平均を出す。ショベルローダーのバケットと、10lバケツ、1l計量カップにて、菌床の容積を計測。bxcにて総質量を計測した。菌床下水汚泥の組成計測方法菌床下水汚泥から四分法により試料から5g採取。aを赤外線水分計にかけ水分率を出し、そのまま乾物量を計測。さらに乾物をL0Iにて処理し、残涯を粗灰分として計量。乾物量から粗灰分を減じたものを有機物量として計量。それぞれ計算された百分率を菌床量、下水汚泥量に乗じ水分含量、有機物量、及び粗灰分量を計算した。L0Iの残渡を灰分とせずに取乱としたのは、その計測方法が簡易的方法にて処理したためである。本微生物処理技術で灰分を消化消滅処理することは不可能であり、灰分が増加した場合には、消滅処理が不可能になることは理論上予想されるが、平成10年9月から平成21年10月までの7次に渡る実験中菌床の分解能力に目立った衰退は未だ見られなかった。下水汚泥処理前後における菌床成分分析:以下の表2に菌床の下水汚混処理前後における菌床成分分析結果を示す。菌床A及びBともに鉛批素で土壌分析による環境基準値を超えている。燐に関しては菌床Aで22減少、菌床Bで06増加している。その他24項目については増加が見られるものの基準値以下、全く増減なし、又は検出されなかった。環境基準値は土壌成分分析のものを流用した。試料の採取は実験前:平成21年6月5日、実験後:平成21年10月28月である。分析機関千葉県環境財団。下水汚泥処理時における菌床温度、含水率及びpH:菌床と下水汚泥との容積混合比を実測で5661としたため菌床の下水汚泥投入中の含水率は,菌床Aで平均464、最高519及び最低383、菌床Bでは平均485、最高567及び最低424とであった。菌床の品温は、菌床Aで平均566°C、最高70°C及び最低283°Cであり、菌床Bで平均551°C、最高703°C及び最低278°Cだった。上記の実証試験では菌床と下水汚泥の容積混合比を5661としたために、汚泥投入時の菌床切替し方法によって静置期間中の最高品温が投入して最初の計測時に検出され、以降、徐々に低下し静置終了時に最低品温になったケースが、菌床A及びBとも3回で、有機性廃棄物分解菌群の実証試験では初めて観測された。菌床のpH水素イオン濃度は、菌床A平均81、最高89及び最低67であり、菌床B平均76、最高82、最低59だった。これらの値は、好気性菌群が活発に活動するアルカリ領域の中に概ねおさまっていた。尚、菌床のpHに下水汚泥の累積投入量がどのような影響を与えるかを調査したところ、A及びBともその影響はほとんど見られなかった。下水汚泥の含水率は、平均831、最高854及び最低771だった。pHは平均81、最高88及び最低75だった。累積投入量と含水率の関係でもpH同様ほとんど影響が見られなかった。下水汚泥には高分子系の凝集剤が添加されているためにストックヤードに静置していても瀝汁が浸出することはなかった。実験終了後の菌床に凝集剤の結晶と思われるガラス様の物質が散見された。地球温暖化ガスの二酸化炭素換算収支:1焼却した場合に排出されると推定される二酸化炭素換算量下水汚泥焼却量×二酸化炭素排出量数値=二酸化炭素換算排出量kgCO27500kgx084kgCO2=6300kgCO22二酸化炭素排出量1日1l、61日間使用で61lの軽油を使用。軽油の排出係数26軽油使用量×排出係数=二酸化炭素換算排出量kgCO261lX261586kgCO23二酸化炭素換算排出削減量排出二酸化炭素換算排出量-二酸化炭素換算削減量=二酸化炭素換算削減量1586kgCO2-6300kgCO2=-61414kgCO2この削減量は名瀬クリーンセンター年間排出量2149476トンC02の00286に相当する。また、同様の計算から現在焼却している下水汚泥全量の465と推計される。このような消化消滅処理をした下水汚泥は、その生成過程で大気中の二酸化炭素を吸収しているので、下水汚泥自体を焼却してもカーボンオフセットとして、その分は除外される。したがって焼却過程で排出される地球温暖化効果ガスは、下水汚泥に含まれる窒素に由来する一酸化二窒素と補助燃料である化石燃料の使用に伴う二酸化炭素換算量が計算される。尚、菌床に含まれる無機成分に関して、菌床A及びBそれぞれ実験開始前と終了後の菌床成分を土壌の環境基準分析項目の分析と、全リンの含有試験を実施した。その結果、菌床Aでは、カドミウム、砒素、総水銀、フッ素及びホウ素の含量に増加が見られ、一方、菌床Bでは、鉛、砒素、及びフッ素の含量に増加が見られた。リンは菌床Aで47から25とマイナス22、菌床Bでは31から37と06増加していた財団法人千葉県環境財団調べ。使用した測定機器:1-1品温外気温:THERMODACEFを使用した。2含水率粗灰分:赤外線水分計FD600菌床は試料5gを110°C、20分で測定。粗灰分は試料5gを110°C、20分で含水率を測定した後、残った乾物の質量を測定し、それをL0Iで残睦を粗灰分として計量。3pH:TESTPAPERSUNIVERSALpHl14KAAGATLTDを使用。菌床水=154菌床下水汚泥容積測定:菌床は、ショベルローダーのバケット容積すりきり一杯250l、プラスチック製バケツ一杯10l、計量カップ1lで計測。菌床に含まれる微生物の同定まず、以下の方法で各検体に含まれている微生物芽胞菌を分離した。検体:検体1:786103最活性時の菌床Bから採取検体2:786104菌床Aから採取検体3:786105菌床Bから採取1.前処理懸濁液の調整:検体1gを生理食塩水10mlに懸濁加熱処理:懸濁液を80°C15分間加熱。2.分離培地:Nutrientagar寒天培養温度:55°C培養時間:1日分離方法:塗抹平板法、01ml表面塗抹土壌生物研究会編;新編土壌微生物学実験、養賢堂、1992微生物の分離法、RDプラニング、1986塗抹枚数:1枚その他の条件:好気培養3.簡易コロニー形態観察1グラム染色:フェイバーGニッスイ日水製薬、東京2光学顕微鏡:BX50F4オリンパス、東京3実体顕微鏡:SZH10オリンパス、東京4.16SrDNA500抽出からサイクルシークエンスまでの操作は以下の各プロトコールに基づき実施した。DNA抽出:InstaGeneMatrixPCR:PrimerSTARHSDNAPolymeraseタカラバイオ、滋賀サイクルシークエンス:BigDyeTerminatorv31CycleSequencingKit使用プライマー:PCR9F926R、シークエンス9F536Rシークエンス:ABIPRISM3130xlGeneticAnalyzerSystem配列決定:ChromasPro14相同性検索及び簡易分子系統解析ソフトウェア:アポロン20テクノスルガラボ、静岡相同性検索及び簡易分子系統解析データベース:アポロンDBBA50テクノスルガラボ、静岡国際塩基配列データベースGenBankDDBJEMBL検体:SIID786103B1検体1由来のコロニーの一つ簡易形態観察の結果、SIID786103Blはグラム染色陽性、好気条件下での生育性を示す有芽胞梓菌0910x2050μmでNutrientagar平板培地上でのコロニー色は淡黄色を呈した。BLASTをもちいたアポロンDBBA50に対する相同性検索の結果、SIID786103Blの16SrDNA部分配列は、Bacillus属の16SrDNAに対し高い相同性を示し、BcoagulansMcGOWANandSNEATHApprovedListsofBacterialNamesIntJSystBacteriol198030225420ATCC7050株の16SrDNAに対し、相同率989の最も高い相同性を示した。GenBankDDBJEMBLに対する相同性検索の結果においても、SIID7861103Blの16SrDNAは、Bacillus属の16SrDNAに対し高い相同性を示し、基準株では、BcoagulansATCC7050株の16SrDNAに対し、相同率989の高い相同性を示した。SIID786103Blの16SrDNAとアポロンDBBA50に対する相同性検索上位10株の16SrDNAをもちいて行った簡易分子系統解析の結果、SIID786103Blは、Bacillus属の菌種の16SrDNAで形成されるクラスター内に含まれることが判明した。又、検体はBcoagulansの16SrDNAとクラスターを形成し、両者は同一の分子系統学的位置を示した。以上のことから、SIID786103BlはBacillus属に含まれ、Bcoagulansに帰属する菌株であると推定された。検体:SIID786103B2検体1由来のコロニーの一つ簡易形態観察の結果、SIID786103B2はグラム染色陽性、好気条件下での生育性を示す梓菌0708x1520μmでNutrientagar平板培地上でのコロニー色は淡黄色を呈した。BLASTをもちいたアポロンDBIBA50に対する相同性検索の結果、SIID786103B2の16SrDNA部分配列は、Ureibacillus属の16SrDNAに対し高い相同性を示し、UsuwonensisKIMLEEWEONKWONGOPARKSCHUMANNandFRITZEUreibacillussuwonesisspNovisolatedfromcottonwastecompostsIntJSystEvolMicrobiol2006566636666T19株の16SrDNAに対し、相同率994の最も高い相同性を示した。DDBJEMBLに対する相同性検索の結果においても、SIID786103B2の16SrDNAはUreibacillus属の16SrDNAに対し高い相同性を示し、基準株ではUsuwonensis6T19株の16SrDNAに対し、相同率994の最も高い相同性を示した。SIID786103B2の16SrDNAとアポロンDBIBA50に対する相同性検索上位10株の16SrDNAをもちいて行った簡易分子系統解析の結果、SIID786103B2は、UneibacilIus属の菌種の16SrDNAで形成されるクラスター内に含まれることが判明した。又、検体はUsuwonensisの16SrDNAとクラスターを形成し、近縁であることが示された。しかしながら、SllD786103B2とUsuwonesisの16SrDNA部分配列間では1塩基が明確に異なっている。以上のことから、SIID786103B2はUreibacillus属に含まれ、Usuwonesisに帰属するか、又は、これと近縁なUreibacillusspとすることが妥当である。検体:SIID786104B1検体2由来のコロニー簡易形態観察の結果、SIID786104Blはグラム染色不定、好気条件下での生育性を示す梓菌0809x1525μmで、Nutrientagar平板培地上でのコロニー色はクリーム色を呈した。BLASTをもちいたアポロンDBBA50に対する相同性検索の結果、SIID786104Blの16SrDNA部分配列は、Bacillus属の16SrDNAに対し高い相同性を示し、BlicheniformisDSM13株の16SrDNAに対し相同率996の最も高い相同性を示した。GenBankDDBJEMBLに対する相同性検索の結果においては、SIID786104Blの16SrDNAは、Bacillus属の16SrDNAに対し高い相同性を示し、基準株では、BlicheniformisATCC14580株及びDSM13株の16SrDNAに対し、相同率996の最も高い相同性を示した。SIID786104Blの16SrDNAとアポロンDBBA50に対する相同性検索上位10株の16SrDNAをもちいて行った簡易分子系統解析の結果、SIID786104Blは、BlicheniformisBaerius及びBstratosphericusの16SrDNAで形成されるクラスター内に含まれることが判明した。又、検体はBlicheniformisの16SrDNAと同一の分子系統学的位置を示し、他の2種との間には距離の存在が認められた。以上のことから、SIID786104Blは、Bacillus属に含まれ、Blicheniformisに帰属する菌株と推定された。検体:SIID786105B1検体3由来のコロニー簡易形態観察の結果、SIID786105Blはグラム染色不定、好気条件下での生育性を示す梓菌0810x2040μmでNutrientagar平板培地上でのコロニー色は淡黄色を呈した。BLASTをもちいたアポロンDBBA50に対する相同性検索の結果、SIID786105Blの16SrDNA部分配列はBrevibacillus属の16SrDNAに対し高い相同性を示し、BThermoruberTAKAGIKADOWAKIandKOMAGATAProposalfortwonewgeneraBrevibacillusgennovandAneurinibacillusgennovIntJSystBacteriol199646939946DSM7064株の16SrDNAに対し、相同率992の最も高い相同性を示した。GenBankDDBJEMBLに対する相同性検索の結果においても、SIID786105Blの16SrDNAはBrevibacillus属の16SrDNAに対し高い相同性を示し、基準株ではBThermoruberMcGOWANandSNEATHApprovedListsofBactarialNamesIntJSystBacteriol198030225420DSM7064株の16SrDNAに対し相同率992の高い相同性を示しましたが、基準株に由来する16SrDNAは検索されなかった。SllD786105Blの16SrDNAとアポロンDBBA50に対する相同性検索上位10株の16SrDNAをもちいて行った簡易分子系統解析の結果、SllD786105Blは、Brevibacillus属の菌種の16SrDNAで形成されるクラスター内に含まれることが判明した。又、検体はBthermoruberの16SrDNAとクラスターを形成し、近縁であることが示された。しかしながら、SllD786105BlとBthermoruberの16SrDNA部分配列間では3塩基が明確に異なっている。以上のことから、SIID786105lBlはBrevibacillus属に含まれ、Bthermoruberに帰属するか、又は、又は、これと近縁なBrevibacillusspとすることが妥当である。PCRDGGE及びRTPCTDGGE解析:以下の要領で、上記の検体に含まれる微生物群集のDNAに関して、PCRDGGE及びRTPCRDGGEを用いて解析した。1DNA抽出抽出方法:ISOILforBeadsBeatingニッポンジーン、東京2RNA抽出抽出方法:RNAPowerSoilTotalRNAIsolationKit3PCR使用プライマー:GC341f534rPCR条件:TouchDown法上記MuyzerGetalPCR予備試験:DNA量25ng及び10ngについて検討4RTPCR逆転写反応使用プライマー:907rRTPCR使用プライマー:GC341f534rRTPCR条件:同上RTPCR予備試験:同上5DGGEDGGE装置:DcodeDGGEコンプリートシステム変性剤濃度勾配:25→65ポリアクリルアミドゲル濃度:8泳動条件:電圧100V、12時間泳動DGGEマーカー:DGGEMarkerI以上のPCRDGGERTPCTDGGEで各検体から得られたバンドに関して国際塩基配列データベースBLAST検索を行った結果、上記の菌床には、Bacilluscoagulans及びBacilluslicheniformis等のBacillus属に属する微生物、Ureibacillussuwonensis若しくはこれに近縁の種等のUreibacillus属に属する微生物、及び、Brevibacillusthermoruber等のBrevibacillus属に属する微生物が含まれていることが確認され、更に、Tepidimicrobium属に属する微生物及び/又はPelotomaculum属に属する微生物が含まれることが示された。"