"以下のA1またはA2のタンパク質。A1配列番号1または配列番号2に記載のFAD依存性グルコースデヒドロゲナーゼFADGDHのアミノ酸配列において、下記aに示されるアミノ酸置換を含むアミノ酸配列を含むタンパク質:aV336A;A2以下のi~iiiを満たすタンパク質;i配列番号1または配列番号2に示されるアミノ酸配列と少なくとも60の相同性を有するアミノ酸配列において下記bのアミノ酸を有するアミノ酸配列を含む、b336Aiiグルコースデヒドロゲナーゼ活性を有する、iii配列番号2のアミノ酸配列を有するタンパク質よりも改善されたキシロース作用性を有する。請求項1に記載のタンパク質において、アミノ酸が置換された位置以外の位置において、さらに、1若しくは数個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加挿入されたアミノ酸配列からなり、かつグルコースデヒドロゲナーゼ活性を有するタンパク質。請求項1~2のいずれかに記載のタンパク質をコードする遺伝子。請求項3に記載の遺伝子を含むベクター。請求項4に記載のベクターで形質転換された形質転換体。請求項5に記載の形質転換体を培養し、グルコースデヒドロゲナーゼ活性を有するタンパク質を採取することを特徴とする、グルコースデヒドロゲナーゼ活性を有するタンパク質を生産する方法。請求項1~2のいずれかに記載のタンパク質を含むグルコースアッセイキット。請求項1~2のいずれかに記載のタンパク質を含むグルコースセンサ。請求項1~2のいずれかに記載のタンパク質を含むグルコース測定法。本発明の目的は、上述のような公知のグルコースセンサ用酵素と比較して、さらに実用面において有利な血糖測定用試薬に使用可能な酵素を提供することである。特許文献2あるいは特許文献3に開示された公知のFADGDHは溶存酸素の影響をうけず、グルコースに対して高い選択性を有することから、グルコースオキシダーゼやPQQGDHに変わる次世代のグルコースセンサ用酵素としての応用が期待されている。しかしながら、本FADGDHはグルコースだけではなくキシロースにも反応するため、キシロース負荷試験を受けている患者の血糖値を測定する場合、測定値の正確性を損ねてしまうという欠点があった。キシロースは、糖質の消化吸収試験に使用される単糖である。そのためキシロース吸収試験を実施している患者が、FADGDHを使用したグルコースセンサを使用した場合、血中のグルコースだけではなくキシロースにも反応するため、測定値が実際のグルコース濃度よりも高値を示すことが問題となる。この問題を解決するために特許文献4に開示された基質特異性が改善した改変型FADGDHがある。本改変型FADGDHは野生株由来のFADGDHの53位のグリシンを他のアミノ酸に置換することで得られる。本改変型FADGDHはキシロースに対する反応性が低減しているという点で有利であるが、これと同調してグルコースに対する反応性も低下するため、測定値の低下や酵素の使用量の増大につながるという欠点があった。詳細には、本発明者らは、特許文献1に記載のFADGDHのキシロース作用性を検討し特許文献4参照、該FADGDHのキシロース作用性は、グルコースに対する反応性を100とした場合、10程度反応することを見出した。即ち、このFADGDHを使用したグルコース濃度を測定した場合、測定値の正確性を損ねてしまうという欠点があることが判明した。本発明者らは鋭意研究を重ねた結果、公知のFADGDHの特定のアミノ酸を他のアミノ酸に置換することで、改変前のFADGDHと同等のグルコースに対する反応性を保持したまま、キシロース作用性を低減した改変型FADGDHを見出し、本発明を完成させた。以下に、代表的な本発明を例示する。[項1]以下のA1またはA2のタンパク質。A1配列番号1または配列番号2に記載のFAD依存性グルコースデヒドロゲナーゼFADGDHのアミノ酸配列において、下記aに示されるアミノ酸置換を含むアミノ酸配列を含むタンパク質:aV336A;A2以下のi~iiiを満たすタンパク質;i配列番号1または配列番号2に示されるアミノ酸配列と少なくとも60の相同性を有するアミノ酸配列において下記bのアミノ酸を有するアミノ酸配列を含む、b336Aiiグルコースデヒドロゲナーゼ活性を有する、iii配列番号2のアミノ酸配列を有するタンパク質よりも改善されたキシロース作用性を有する。[項2]項1に記載のタンパク質において、アミノ酸が置換された位置以外の位置において、さらに、1若しくは数個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加挿入されたアミノ酸配列からなり、かつグルコースデヒドロゲナーゼ活性を有するタンパク質。[項3]項1~2のいずれかに記載のタンパク質をコードする遺伝子。[項4]項3に記載の遺伝子を含むベクター。[項5]項4に記載のベクターで形質転換された形質転換体。[項6]項5に記載の形質転換体を培養し、グルコースデヒドロゲナーゼ活性を有するタンパク質を採取することを特徴とする、グルコースデヒドロゲナーゼ活性を有するタンパク質を生産する方法。[項7]項1~2のいずれかに記載のタンパク質を含むグルコースアッセイキット。[項8]項1~2のいずれかに記載のタンパク質を含むグルコースセンサ。[項9]項1~2のいずれかに記載のタンパク質を含むグルコース測定法。本発明により臨床検査薬用酵素として有用な改変型FADGDHを創出し、該FADGDHをグルコースセンサに応用することで、グルコースセンサの測定精度の向上につながるものである。以下に、本発明を詳細に説明する。本明細書において、アミノ酸配列を構成するアミノ酸はアルファベット1文字又は3文字で表記される。例えば、グリシンは、Gly又はGと表記される。アミノ酸配列上のアミノ酸の位置は、番号を用いて特定される。例えば、336番目のバリンがアラニンに置換されている場合は、V336Aと表記する。また、336Aは、変異の有無を問わず、336位又は336番目のアミノ酸がAlaAであることを示す。配列番号1、配列番号2、配列番号3において、アミノ酸の表記は、メチオニンを1として番号付けされている。本明細書において、配列番号1は、野生型のアスペルギルスオリゼ由来のFADGDHのアミノ酸配列を示す。配列番号2は、配列番号1のアミノ酸配列における163位のグリシンがアルギニン置換され、551位バリンがシステインに置換されたアミノ酸配列を示す。配列番号2で示されるアミノ酸配列から成るタンパク質は、グルコースデヒドロゲナーゼ活性を保持している。以下、配列番号2で示されるアミノ酸配列から成るタンパク質を適宜配列番号2のFADGDHと表記する。配列番号1及び2のアミノ酸配列は、例えば、特許文献2又は特許文献3に開示されている。キシロース作用性が低下した改変型FADGDH本願発明の一実施形態は、配列番号1または配列番号2に記載のFADGDHのアミノ酸配列において、336位、もしくは、それと同等の位置においてアミノ酸置換を有する、改変前よりもキシロース作用性が低下した改変型FADGDHである。具体的には、以下のA1またはA2のタンパク質が例示される。A1配列番号1または配列番号2に記載のFAD依存性グルコースデヒドロゲナーゼFADGDHのアミノ酸配列において、下記aに示されるアミノ酸置換を含むアミノ酸配列を含むタンパク質:aV336A;A2以下のi~iiiを満たすタンパク質;i配列番号1または配列番号2に示されるアミノ酸配列と少なくとも60の相同性を有するアミノ酸配列において下記bのアミノ酸を有するアミノ酸配列を含む、b336Aiiグルコースデヒドロゲナーゼ活性を有する、iii配列番号2のアミノ酸配列を有するタンパク質よりも改善されたキシロース作用性を有する。グルコースに対する反応性本願におけるグルコースに対する反応性とは培養力価の増減を指標として判断した。培養力価とは、D-グルコースを基質とした場合の培養液1mlあたりのGDH活性である。培養力価比とは、配列番号2で示される熱安定性が向上した改変型FADGDH以下、Mut1とも示す。の培養力価の値を1とし、当該改変型FADGDHの比から計算する。これが表1における培養力価比である。この値が1に近いほど野生株と同等の培養力価を保持していると判断される。キシロース作用性本願におけるキシロース作用性とは、グルコースを基質とした場合の反応速度とキシロースを基質とした場合の反応速度の相対比グルコースを100とする。である。次いで、配列番号2で示される熱安定性の向上した改変型FADGDHMut1のキシロ-ス作用性の値を1とし、当該改変型FADGDHの相対比を計算しなおす。これが表1におけるキシロース作用性比である。この値が小さいほど、キシロース作用性が低下していると判断される。本願発明の改変型FADGDHは、好ましくは、キシロース作用性比が改変前と比べて0.9以下に低減している改変型FADGDHである。さらに好ましくは、改変前と比べて0.8以下に低減している改変型FADGDHである。あるいは、本願発明の改変型FADGDHは、好ましくは、キシロース作用性が10以下である。さらに好ましくは、キシロース作用性が8以下である。キシロース作用性の測定方法は、後述のFADGDHの活性測定法を用いて求める。A2タンパク質は、以下のi~iiiの要件を満たす。i配列番号2に示されるアミノ酸配列と少なくとも60の相同性を有するアミノ酸配列において下記bのアミノ酸を有するアミノ酸配列を含む、b336Aiiグルコースデヒドロゲナーゼ活性を有する、iii配列番号2のアミノ酸配列を有するタンパク質よりも低下したキシロース作用性を有する。即ち、A2タンパク質は、配列番号2に示されるアミノ酸配列と少なくとも60のアミノ酸の相同性を有するアミノ酸配列を含み、且つ、上記bで示される少なくとも一つのアミノ酸を含む。更に、B2タンパク質は、グルコースデヒドロゲナーゼ活性を保持し、配列番号2のFADGDHと比較して低下したキシロース作用性を有する。配列番号1または配列番号2の少なくともいずれかと60以上の相同性を有するアミノ酸配列を有し、かつ、グルコースデヒドロゲナーゼ活性を有するタンパク質をコードするアミノ酸配列としては、例えば配列番号3に示される、アスペルギルステレウス由来の野生型FADGDHのアミノ酸配列が挙げられる。そのアミノ酸配列は、特許文献5に開示されている。本願明細書において、アミノ酸配列の相同性とは、GENETYXソフトで比較した値を意味する。例えば、アスペルギルスオリゼ由来の野生型FADGDHのアミノ酸配列配列番号1と、アスペルギルステレウス由来の野生型FADGDHのアミノ酸配列配列番号3を、GENETYXソフトにて比較分析したところ、63.5の相同性がある図2参照。また、配列番号2に示されるアミノ酸配列と配列番号3に示されるアミノ酸配列との相同性は、63.4である。グルコースデヒドロゲナーゼ活性及び改善された温度依存性を保持した、配列番号2のアミノ酸配列と60の相同性を有するアミノ酸を含むタンパク質は、例えば、配列番号2と配列番号3とについてアライメント作成し、保存性のある領域以外の領域について変異を加えることによって作製することが可能である。アミノ酸配列に変異を加えても酵素活性及び温度依存性に影響を与えないと推測される領域としては、X線結晶構造からタンパク質表面に位置する領域があげられる。例えば、1位~40位、111位~190位、213位~310位、340位~397位、420位~435位、455位~492位、514位~538位、552位~572位である。A2タンパク質、B2タンパク質、C2タンパク質がそれぞれ含むアミノ酸配列は、上記i~iiiの要件を満たす限り特に制限されないが、好ましくは配列番号2で示されるアミノ酸配列と70以上の相同性を有し、より好ましくは80以上の相同性を有し、更に好ましくは90以上の相同性を有し、特に好ましくは95以上の相同性を有する。尚、本明細書におけるアミノ酸の相同性とは、アミノ酸の同一性を意味する。上記bに例示される特定のアミノ酸を有することにより、A2タンパク質は、配列番号1または2のFADGDHよりもキシロースに対する作用性が低減されている。なお、上記の変換位置は、アスペルギルスオリゼ由来のもの配列番号1、または、それを改変したもの配列番号2以外の起源たとえば、アスペルギルステレウスに由来するFADGDH活性を有する蛋白質のアミノ酸配列における同等の位置であっても良い。この同等の位置は、そのアミノ酸配列の一次構造例えばアラインメント、立体構造の知見を基に判断することができる。アラインメントは、GENETYXWIN株式会社ゼネティックス製を用いて比較することができる。本願明細書において、アミノ酸配列の相同性は、GENETYXソフトで比較した値を意味する。また、本願明細書において、あるアミノ酸配列における配列番号1の336位と同等の位置は、GENETYXソフトで配列を比較したとき、配列番号1の336位と対応する位置をもって同等と判断する。同様に、アミノ酸配列における配列番号1の336位と同等の位置は、GENETYXソフトで配列の一次構造例えばアラインメントを比較したとき、配列番号1の336位と対応する位置をもって同等と判断する。必要に応じてさらに立体構造の知見などを参照しても良い。具体的には、アスペルギルスオリゼ野生株由来のFADGDHのアミノ酸配列とアスペルギルステレウス野生株由来のFADGDHのアミノ酸配列とのアライメントの比較データより、本発明の336位と同等の位置とは、アスペルギルステレウス野生株由来のFADGDHの332位のVに相当する。なお、本願発明のタンパク質は、上記のタンパク質において、グルコースデヒドロゲナーゼ活性を有するものであって、さらに、キシロース作用性が低下しているものであれば、336位にアミノ酸置換を有し、さらに、それら以外の部位に1箇所以上たとえば数箇所のアミノ酸変異を有するものであっても良い。変異は、1若しくは数個の置換、欠失、挿入、さらにはその組合せであっても良い。例えば、A1、A2、B1、B2、C1およびC2からなる群のうちいずれかよりなるタンパク質において、アミノ酸が置換された位置以外の位置において、さらに、1若しくは数個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加挿入されたアミノ酸配列からなり、かつグルコースデヒドロゲナーゼ活性を有するタンパク質もまた、本願発明の一実施形態である。なお、GENETYXソフトは、GENETYXCORPORATIONから販売されているGENETYXWINVersion6.1のものを使用した。本願発明の改変型FADGDHは、種々の公知の手段で作製することが出来る。以下に、配列番号1で示されるアスペルギルスオリゼ野生株由来のFADGDHのアミノ酸配列を他のアミノ酸に置換したことで得られる改変型改変型FADGDHの製造法を例示する。製造法は、特に限定されないが、以下に示すような手順で製造することが可能である。アスペルギルスオリゼ野生株由来のFADGDHを構成するアミノ酸配列を改変する方法としては、通常行われる遺伝情報を改変する手法が用いられる。すなわち、タンパク質の遺伝情報を有するDNAの特定の塩基を変換することにより、或いは特定の塩基を挿入または欠失させることにより、改変タンパク質の遺伝情報を有するDNAが作成される。DNA中の塩基配列を変換する具体的な方法としては、例えば市販のキットTransformerMutagenesisKit;Clonetech社,EXOIII/MungBeanDeletionKit;Stratagene製,QuickChangeSiteDirectedMutagenesisKit;Stratagene製などの使用、或いはポリメラーゼ連鎖反応法PCRの利用が挙げられる。本発明の改変型FADGDHの改変の基になる遺伝子は、特に限定されるものではないが、Aspergillus属由来のFADGDHを用いることが望ましい。さらに好ましくはAspergillusoryzae由来あるいはAspergillusterreus由来のFADGDHであることが望ましい。Aspergillusoryzae由来のFADGDHとしては、配列番号1または配列番号2で表されるタンパク質が例示できる。Aspergillusterreus由来のFADGDHとしては、配列番号3で表されるタンパク質が例示できる。本願発明の一実施形態は、上記のいずれかに記載のタンパク質をコードする遺伝子である。改変前のタンパク質をコードする遺伝子として、たとえば、上記の配列番号1で表されるタンパク質をコードする遺伝子としては、配列番号4で表される塩基配列が例示できる。また、上記の配列番号2で表されるタンパク質をコードする遺伝子としては、配列番号5で表される塩基配列が例示できる。また、上記の配列番号3で表されるタンパク質Aspergillusterreus由来のFADGDHをコードする遺伝子としては、配列番号6で表される塩基配列が例示できる。本願発明の遺伝子は、上記改変前のタンパク質をコードする遺伝子の配列において、336位のアミノ酸、あるいはそれと同等の位置のアミノ酸をコードする部分が、他のアミノ酸をコードするように置換されている。本発明の改変型FADGDHをコードする遺伝子は、配列番号4、5または6に記載の塩基配列と相補的な塩基配列からなるDNAとストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、かつFADGDH活性を有する蛋白質をコードするDNAである。ここでストリンジェントな条件とは、相同性が高い核酸同士、例えば完全にマッチしたハイブリッドのTmから該Tmより15°C、好ましくは10°C低い温度までの範囲の温度でハイブリダイズする条件をいう。具体的には、例えば一般的なハイブリダイゼーション用緩衝液中で、68°C、20時間の条件でハイブリダイズする条件をいう。本発明において、配列番号4、5または6に記載の塩基配列がコードするアミノ酸配列と50以上の相同性、好ましくは80以上の相同性、さらに好ましくは90以上の相同性、さらに好ましくは95以上の相同性を有するアミノ配列をコードする塩基配列がストリンジェントな条件に相当すると考えられる。本願発明の遺伝子は、たとえばGDHの発現を向上させる目的などで、コドンユーセージCodonusageを変更したものを含みうる。具体的には配列番号1及び2の336位のバリンをアラニンに置換する場合は、配列番号4及び配列番号5記載の塩基配列における1006番目から1008番目のGTGを、GCG、GCC、GCA、GCTのいずれに改変しても良い。配列番号3の332位のバリンをアラニンに置換する場合は、配列番号6記載の塩基配列における994番目から996番目のGTCを、GCG、GCC、GCA、GCTのいずれに改変しても良い。本願発明の一実施形態は、上記の遺伝子を含むベクター、該ベクターで形質転換された形質転換体、該形質転換体を培養し、グルコースデヒドロゲナーゼ活性を有するタンパク質を採取するグルコースデヒドロゲナーゼ活性を有するタンパク質を生産する方法である。例えば、上記のGDH遺伝子を発現用ベクタープラスミド等多くのものが当該技術分野において知られているに挿入し、適当な宿主大腸菌等多くのものが当該技術分野において知られているを形質転換する。得られた形質転換体を培養し、培養液から遠心分離などで菌体を回収した後、菌体を機械的方法またはリゾチームなどの酵素的方法で破壊し、また、必要に応じてEDTAなどのキレート剤や界面活性剤等を添加して可溶化し、GDHを含む水溶性画分を得ることができる。または適当な宿主ベクター系を用いることにより、発現したGDHを直接培養液中に分泌させることが出来る。上記のようにして得られたGDH含有溶液を、例えば減圧濃縮、膜濃縮、さらに硫酸アンモニウム、硫酸ナトリウムなどの塩析処理、あるいは親水性有機溶媒、例えばメタノール、エタノール、アセトンなどによる分別沈殿法により沈殿せしめればよい。また、加熱処理や等電点処理も有効な精製手段である。また、吸着剤あるいはゲルろ過剤などによるゲルろ過、吸着クロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、アフィニティクロマトグラフィーを行うことにより、精製されたGDHを得ることができる。該精製酵素標品は、電気泳動SDS-PAGE的に単一のバンドを示す程度に純化されていることが好ましい。これらは、例えば、以下の文献に従って進めることができる。aタンパク質実験プロトコール第1巻機能解析編,第2巻構造解析編秀潤社西村善文,大野茂男監修b改訂タンパク質実験ノート上抽出と分離精製洋土社岡田雅人,宮崎香編集また、以下に例示する方法によって進めることもできる。作製されたタンパク質の遺伝情報を有するDNAは、ベクターと連結された状態にて宿主微生物中に移入される。ベクターとしては、宿主微生物内で自立的に増殖し得るファージまたはプラスミドから遺伝子組換え用として構築されたものが適している。ファージとしては、例えばエシェリヒアコリーを宿主微生物とする場合にはLambdagt10、Lambdagt11などが例示される。また、プラスミドとしては、例えば、エシェリヒアコリーを宿主微生物とする場合には、pBR322、pUC19、pKK223-3、pBluescriptなどが例示される。なかでも、pBluescriptなど、クローニングサイト上流にエシェリヒアコリー内で認識されうるプロモーターを保持するものが好ましい。また、適当な宿主微生物としては、組換えベクターが安定であり、かつ自立増殖可能で外来遺伝子の形質発現できるものであれば特に制限されない。エシェリヒアコリーではエシェリヒアコリーW3110、エシェリヒアコリーC600、エシェリヒアコリーHB101、エシェリヒアコリーJM109、エシェリヒアコリーDH5αなどを用いることができる。宿主微生物に組換えベクターを移入する方法としては、例えば宿主微生物がエシェリヒア属に属する微生物の場合には、カルシウムイオンの存在下で組換えDNAの移入を行なう方法などを採用することができ、更にエレクトロポレーション法を用いても良い。更には、市販のコンピテントセル例えば、コンピテントハイDH5α;東洋紡績製を用いても良い。宿主として、酵母が用いられる場合にリチウム法、エレクトロポレーション法が、また、糸状菌が用いられ場合にはプロトプラスト法などが用いられる。本発明において、GDHをコードする遺伝子を得る方法としては、次のような方法が挙げられる。アスペルギルスオリゼのゲノム配列情報を用い、予測GDH遺伝子を見出すことができる。ついで、アスペルギルスオリゼの菌体よりmRNAを調製し、cDNAを合成する。こうして得られたcDNAをテンペレートとして、PCR法によりGDH遺伝子を増幅させ、本遺伝子をベクターと両DNAの平滑末端または付着末端においてDNAリガーゼなどにより結合閉鎖させて組換えベクターを構築する。該組換えベクターを複製可能な宿主微生物に移入した後、ベクターのマーカーを利用してGDHをコードする遺伝子を含有する組換え微生物を得る。上記のように得られた形質転換体である微生物は、栄養培地で培養されることにより、多量のGDHを安定に生産し得る。組換え体の選択は、ベクターのマーカーとGDH活性を同時に発現する微生物を検索すればよい。例えば、薬剤耐性マーカーに基づく選択培地で生育し、かつGDHを生成する微生物を選択すればよい。GDH遺伝子の塩基配列は、Science,第214巻,12051981に記載されたジデオキシ法により解読した。また、GDHのアミノ酸配列は上記のように決定された塩基配列より推定した。上記のようにして、一度選択されたGDH遺伝子を保有する組換えベクターより、他の微生物にて複製できる組換えベクターへの移入は、GDH遺伝子を保持する組換えベクターから制限酵素やPCR法によりGDH遺伝子であるDNAを回収し、他のベクター断片と結合させることにより容易に実施できる。また、これらのベクターによる他の微生物の形質転換は、カルシウム処理によるコンピテントセル法やエレクトロポレーション法、プロトプラスト法などを用いることができる。なお、本発明のGDH遺伝子は、グルコースデヒドロゲナーゼ活性を有する限り、該遺伝子の翻訳後のアミノ酸配列の各アミノ酸残基の一部が欠失または置換されるようなDNA配列をもつものでもよく、また他のアミノ酸残基が付加または置換されるようなDNA配列をもつものでもよい。野生株GDHをコードする遺伝子を改変する方法としては、通常行われる遺伝情報を改変する手法が用いられる。すなわち、タンパク質の遺伝情報を有するDNAの特定の塩基を変換することにより、或いは特定の塩基を挿入または欠失させることにより、改変蛋白質の遺伝情報を有するDNAが作成される。DNA中の塩基を変換する具体的な方法としては、例えば市販のキットTransformerMutagenesisKit;Clonetech製,EXOIII/MungBeanDeletionKit;Stratagene製,QuickChangeSiteDirectedMutagenesisKit;Stratagene製などの使用、或いはポリメラーゼ連鎖反応法PCRの利用が挙げられる。形質転換体である宿主微生物の培養形態は、宿主の栄養生理的性質を考慮して培養条件を選択すればよい。多くの場合は液体培養で行い、工業的には通気攪拌培養を行うのが有利である。ただし、生産性を考えた場合に、宿主として糸状菌を使用し、固体培養で行った方が有利な場合もある。培地の栄養源としては,微生物の培養に通常用いられるものが広く使用され得る。炭素源としては資化可能な炭素化合物であればよく、例えば、グルコース、シュークロース、ラクトース、マルトース、ラクトース、糖蜜、ピルビン酸などが使用される。また、窒素源としては利用可能な窒素化合物であればよく、例えば、ペプトン、肉エキス、酵母エキス、カゼイン加水分解物、大豆粕アルカリ抽出物などが使用される。その他、リン酸塩、炭酸塩、硫酸塩、マグネシウム、カルシウム、カリウム、鉄、マンガン、亜鉛などの塩類、特定のアミノ酸、特定のビタミンなどが必要に応じて使用される。培養温度は菌が成育し、GDHを生産する範囲で適宜変更し得るが、好ましくは20~37°C程度である。培養時間は条件によって多少異なるが、GDHが最高収量に達する時期を見計らって適当時期に培養を完了すればよく、通常は6~48時間程度である。培地のpHは菌が発育し、GDHを生産する範囲で適宜変更し得るが、好ましくはpH6.0~9.0程度の範囲である。培養物中のGDHを生産する菌体を含む培養液をそのまま採取し、利用することもできるが、一般には、常法に従って、GDHが培養液中に存在する場合はろ過、遠心分離などにより、GDH含有溶液と微生物菌体とを分離した後に利用される。GDHが菌体内に存在する場合には、得られた培養物からろ過または遠心分離などの手段により菌体を採取し、次いで、この菌体を機械的方法またはリゾチームなどの酵素的方法で破壊し、また、必要に応じて、EDTA等のキレート剤及び界面活性剤を添加してGDHを可溶化し、水溶液として分離採取する。上記のようにして得られたGDH含有溶液を、例えば減圧濃縮、膜濃縮、さらに硫酸アンモニウム、硫酸ナトリウムなどの塩析処理、あるいは親水性有機溶媒、例えばメタノール、エタノール、アセトンなどによる分別沈殿法により沈殿せしめればよい。また、加熱処理や等電点処理も有効な精製手段である。その後、吸着剤あるいはゲルろ過剤などによるゲルろ過、吸着クロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、アフィニティクロマトグラフィーを行うことにより、精製されたGDHを得ることができる。例えば、セファデックスSephadexゲルGEヘルスケアバイオサイエンス社製などによるゲルろ過、DEAEセファロースCL-6BGEヘルスケアバイオサイエンス社製、オクチルセファロースCL-6BGEヘルスケアバイオサイエンス社製等のカラムクロマトグラフィーにより分離、精製し、精製酵素標品を得ることができる。該精製酵素標品は、電気泳動SDS-PAGE的に単一のバンドを示す程度に純化されていることが好ましい。本発明において、FADGDHの活性測定は以下の条件で行う。[試験例]<試薬>50mMPIPES緩衝液pH6.50.1TritonX-100を含む24mMPMS溶液2.0mM2,6-ジクロロフェノールインドフェノールDCPIP溶液1MD-グルコース溶液上記PIPES緩衝液20.5ml、DCPIP溶液1.0ml、PMS溶液2.0ml、D―グルコース溶液5.9mlを混合して反応試薬とする。<測定条件>反応試薬3mlを37°Cで5分間予備加温する。GDH溶液0.1mlを添加しゆるやかに混和後、水を対照に37°Cに制御された分光光度計で、600nmの吸光度変化を5分記録し、直線部分から1分間あたりの吸光度変化ΔODTESTを測定する。盲検はGDH溶液の代わりにGDHを溶解する溶媒を試薬混液に加えて同様に1分間あたりの吸光度変化ΔODBLANKを測定する。これらの値から次の式に従ってGDH活性を求める。ここでGDH活性における1単位Uとは、濃度200mMのD-グルコース存在下で1分間に1マイクロモルのDCPIPを還元する酵素量として定義している。キシロースに対する反応性を測定する際は、上記の1MD-グルコース溶液の代わりに1MD-キシロースを使用すればよい。活性U/ml={-ΔODTEST-ΔODBLANK×3.0×希釈倍率}/{16.3×0.1×1.0}なお、式中の3.0は反応試薬酵素溶液の液量ml、16.3は本活性測定条件におけるミリモル分子吸光係数cm2/マイクロモル、0.1は酵素溶液の液量ml、1.0はセルの光路長cmを示す。グルコースアッセイキット本発明はまた、本発明に従う改変型FADGDHを含むグルコースアッセイキットを特徴とする。本発明のグルコースアッセイキットは、本発明に従う改変型FADGDHを少なくとも1回のアッセイに十分な量で含む。典型的には、キットは、本発明の改変型FADGDHに加えて、アッセイに必要な緩衝液、メディエーター、キャリブレーションカーブ作製のためのグルコース標準溶液、ならびに使用の指針を含む。本発明に従う改変型FADGDHは種々の形態で、例えば、凍結乾燥された試薬として、または適切な保存溶液中の溶液として提供することができる。グルコースセンサ本発明はまた、本発明に従う改変型FADGDHを用いるグルコースセンサを特徴とする。電極としては、カーボン電極、金電極、白金電極などを用い、この電極上に本発明の酵素を固定化する。固定化方法としては、架橋試薬を用いる方法、高分子マトリックス中に封入する方法、透析膜で被覆する方法、光架橋性ポリマー、導電性ポリマー、酸化還元ポリマーなどがあり、あるいはフェロセンあるいはその誘導体に代表される電子メディエーターとともにポリマー中に固定あるいは電極上に吸着固定してもよく、またこれらを組み合わせて用いてもよい。典型的には、グルタルアルデヒドを用いて本発明の改変型FADGDHをカーボン電極上に固定化した後、アミン基を有する試薬で処理してグルタルアルデヒドをブロッキングする。グルコース濃度の測定は、以下のようにして行うことができる。恒温セルに緩衝液を入れ、一定温度に維持する。メディエーターとしては、フェリシアン化カリウム、フェナジンメトサルフェートなどを用いることができる。作用電極として本発明の改変型FADGDHを固定化した電極を用い、対極例えば白金電極および参照電極例えばAg/AgCl電極を用いる。カーボン電極に一定の電圧を印加して、電流が定常になった後、グルコースを含む試料を加えて電流の増加を測定する。標準濃度のグルコース溶液により作製したキャリブレーションカーブに従い、試料中のグルコース濃度を計算することができる。以下、本発明を実施例により具体的に説明する。実施例1改変型FADGDHの遺伝子の作製配列番号2のFADGDHをコードする遺伝子配列番号5を含む組み換えプラスミドpAOGDH-M76で市販の大腸菌コンピテントセルE.coliDH5a;TOYOBO社製を形質転換し、アンピシリンを含んだLB寒天培地1.0ポリペプトン、0.5酵母エキス、1.0NaCl、1.5寒天;pH7.3に塗布した後、30°Cで一晩培養した。得られた形質転換体をアンピシリン50mg/ml;ナカライテスク社製を含んだLB液体培地1ポリペプトン、0.5酵母エキス、1.0NaCl;pH6.5を摂取し、30°Cで一晩振とう培養した。得られた菌体から常法によりプラスミドを調整した。実施例2336位のバリンをアラニンに置換実施例1で使用したpAOGDH-M76を鋳型として、336位のバリンをアラニンに置換するよう設計した配列番号7の合成オリゴヌクレオチドとそれに相補的な合成オリゴヌクレオチドをQuickChangeTMSite-DirectedMutagenesisKitSTRATAGENE製を用いてPCRを行った。続いて、PCR産物で市販の大腸菌コンピテントセルE.coliDH5a;TOYOBO社製を形質転換し、アンピシリンを含んだLB寒天培地で37°C、16時間培養した。その後、改変型FADGDHを有したシングルコロニーを、アンピシリンを含んだLB液体培地に摂取し、30°Cで一晩振とう培養した。その後、1mlの培養液を摂取し、常法によりプラスミドを抽出した。抽出したプラスミドの当該部位をDNAシークエンサーABIPRISMTM3700DNAAnalyzer;Perkin-Elmer製を用いて特定した。336位をアラニンに置換した改変型FADGDHを有するプラスミドをpAOGDH-M76-V336Aと命名した。実施例3336位のバリンをアラニンに置換した改変型FADGDHの培養力価とキシロース作用性の評価実施例2で取得したpAOGDH-M76-V336Aで形質転換した大腸菌DH5αをアンピシリンを含んだLB寒天培地で30°C、16時間培養した。その後、改変型FADGDHのシングルコロニーをアンピシリンを含んだLB液体培地に摂取し、30°Cで一晩振とう培養した。その培養液の一部から遠心分離によって得られた菌体を回収し、50mMのリン酸緩衝液pH6.0中でガラスビーズを用いて該菌体を破砕することにより粗酵素液を調製した。調製した粗酵素液を用いて、上述した活性測定法により培養力価とキシロース作用性を測定した。表1にその結果を示す。表1は、5mlLB培地/試験管,30°C,16時間培養した時の336位を改変した改変型FADGDHの培養力価およびキシロース作用性を比較した結果である。改変前のFADGDHMut1とV336Aの培養力価は同等であった。また、Mut1のキシロース作用性は10.9であったのに対して、V336Aのキシロース作用性は7.9に低下した。"