カテーテル中のカテーテルロック溶液であって、0.3~1.0モル濃度を有する塩酸溶液を含む、カテーテルロック溶液。前記塩酸溶液が、0.3~0.5モル濃度の塩酸を含む、請求項1記載のカテーテル中のカテーテルロック溶液。さらに、抗菌剤を含む、請求項1記載のカテーテル中のカテーテルロック溶液。前記抗菌剤が、スルファジアジン銀を含む、請求項3記載のカテーテル中のカテーテルロック溶液。前記スルファジアジン銀が、前記カテーテルから溶出され、前記カテーテルの表面近傍で少なくとも128ppmの濃度となるように組み込まれている、請求項4記載のカテーテル中のカテーテルロック溶液。前記抗菌剤が、5-フルオロウラシルを含む、請求項3記載のカテーテル中のカテーテルロック溶液。前記5-フルオロウラシルが、前記カテーテルから溶出され、前記カテーテルの表面近傍で8~256ppmの濃度となるように組み込まれている、請求項6記載のカテーテル中のカテーテルロック溶液。前記抗菌剤が、リファンピン及びミノサイクリンを含む、請求項3記載のカテーテル中のカテーテルロック溶液。さらに、抗凝固剤を含む、請求項1記載のカテーテル中のカテーテルロック溶液。前記抗凝固剤が、ヘパリンである、請求項9記載のカテーテル中のカテーテルロック溶液。カテーテル中のカテーテルサルベージ溶液であって、0.3~1.0モル濃度を有する塩酸溶液を含む、カテーテルサルベージ溶液。前記塩酸溶液が、0.3~0.5モル濃度の塩酸を含む、請求項11記載のカテーテルサルベージ溶液。さらに、抗菌剤を含む、請求項11記載のカテーテル中のカテーテルサルベージ溶液。前記抗菌剤が、スルファジアジン銀を含む、請求項13記載のカテーテル中のカテーテルサルベージ溶液。前記スルファジアジン銀が、前記カテーテルから溶出され、前記カテーテルの表面近傍で少なくとも128ppmの濃度となるように組み込まれている、請求項14記載のカテーテル中のカテーテルサルベージ溶液。前記抗菌剤が、5-フルオロウラシルを含む、請求項13記載のカテーテル中のカテーテルサルベージ溶液。前記5-フルオロウラシルが、前記カテーテルから溶出され、前記カテーテルの表面近傍で8~256ppmの濃度となるように組み込まれている、請求項16記載のカテーテル中のカテーテルサルベージ溶液。前記抗菌剤が、リファンピン及びミノサイクリンを含む、請求項13記載のカテーテル中のカテーテルサルベージ溶液。さらに、抗凝固剤を含む、請求項11記載のカテーテル中のカテーテルサルベージ溶液。前記抗凝固剤が、ヘパリンである、請求項19記載のカテーテル中のカテーテルサルベージ溶液。カテーテルの微生物混入を防止する方法であって、0.3~1.0モル濃度を有する塩酸溶液を前記カテーテルの内腔に注入する工程を含む、前記方法。さらに、前記塩酸溶液を前記内腔に約1時間滞留させる工程を含む、請求項21記載の方法。さらに、前記約1時間の滞留の後、前記内腔から前記塩酸溶液を排出する工程を含む、請求項22記載の方法。さらに、前記塩酸溶液の排出の後、前記カテーテルを生理食塩水溶液で洗浄する工程を含む、請求項23記載の方法。前記塩酸溶液が、0.3~0.5モル濃度の塩酸を含む、請求項21記載の方法。前記塩酸溶液が、さらに抗菌剤を含む、請求項21記載の方法。前記抗菌剤が、スルファジアジン銀を含む、請求項26記載の方法。前記スルファジアジン銀が、前記カテーテルから溶出され、前記カテーテルの表面近傍で少なくとも128ppmの濃度となるように組み込まれている、請求項27記載の方法。前記抗菌剤が、5-フルオロウラシルを含む、請求項26記載の方法。前記5-フルオロウラシルが、前記カテーテルから溶出され、前記カテーテルの表面近傍で8~256ppmの濃度となるように組み込まれている、請求項29記載の方法。前記抗菌剤が、リファンピン及びミノサイクリンを含む、請求項26記載の方法。さらに、抗凝固剤を含む、請求項21記載の方法。前記抗凝固剤が、ヘパリンである、請求項32記載の方法。留置カテーテルの微生物混入を有する患者を治療する方法であって、0.3~1.0モル濃度を有する塩酸溶液を前記カテーテルの内腔に注入する工程を含む、前記方法。さらに、前記塩酸溶液を前記内腔に約30分滞留させる工程を含む、請求項34記載の方法。さらに、前記の滞留時間の後、前記内腔から前記塩酸溶液を排出する工程を含む、請求項35記載の方法。さらに、前記塩酸溶液の排出の後、前記カテーテルを生理食塩水溶液で洗浄する工程を含む、請求項36記載の方法。前記塩酸溶液が、0.3~0.5モル濃度の塩酸を含む、請求項34記載の方法。前記カテーテルに存在する微生物混入によるバイオフィルムに応じて、0.4~1.0モル濃度の塩酸を選択する工程を含む、請求項34記載の方法。前記塩酸溶液が、さらに抗菌剤を含む、請求項34記載の方法。前記抗菌剤が、スルファジアジン銀を含む、請求項40記載の方法。前記スルファジアジン銀が、前記カテーテルから溶出され、前記カテーテルの表面近傍で少なくとも128ppmの濃度となるように組み込まれている、請求項41記載の方法。前記抗菌剤が、5-フルオロウラシルを含む、請求項40記載の方法。前記5-フルオロウラシルが、前記カテーテルから溶出され、前記カテーテルの表面近傍で8~256ppmの濃度となるように組み込まれている、請求項43記載の方法。前記抗菌剤が、リファンピン及びミノサイクリンを含む、請求項40記載の方法。さらに、抗凝固剤を含む、請求項34記載の方法。前記抗凝固剤が、ヘパリンである、請求項46記載の方法。カテーテル及び0.3~1.0モル濃度を有する塩酸溶液を含む、カテーテルキット。さらに、前記カテーテルの口に結合するように構成され、かつ前記塩酸溶液を含むシリンジを備えている、請求項48記載のカテーテルキット。さらに、生理食塩水溶液を含む、請求項48記載のカテーテルキット。前記塩酸溶液が、0.3~0.5モル濃度の塩酸を含む、請求項48記載のカテーテルキット。さらに、抗菌剤を含む、請求項48記載のカテーテルキット。前記抗菌剤が、スルファジアジン銀を含む、請求項52記載のカテーテルキット。前記スルファジアジン銀が、前記カテーテルから溶出され、前記カテーテルの表面近傍で少なくとも128ppmの濃度となるように組み込まれている、請求項53記載のカテーテルキット。前記抗菌剤が、5-フルオロウラシルを含む、請求項52記載のカテーテルキット。前記5-フルオロウラシルが、前記カテーテルから溶出され、前記カテーテルの表面近傍で8~256ppmの濃度となるように組み込まれている、請求項55記載のカテーテルキット。前記抗菌剤が、リファンピン及びミノサイクリンを含む、請求項52記載のカテーテルキット。さらに、抗凝固剤を含む、請求項48記載のカテーテルキット。前記抗凝固剤が、ヘパリンである、請求項58記載のカテーテルキット。従って、本明細書に記載の不都合を少なくともある程度克服できる、抗菌性を有するカテーテルロック溶液を提供することが望ましい。一観点において、抗菌性を有するカテーテルロック溶液、カテーテルロック溶液キット及びカテーテルの使用方法を提供する、本発明は大いに上記要求を満たす。本発明の実施態様は、カテーテル中のカテーテルロック溶液に関する。カテーテルロック溶液は、0.3~1.0モル濃度を有する塩酸溶液を含む。本発明の別の実施態様は、カテーテル中のカテーテルサルベージ溶液に関する。カテーテルサルベージ溶液は、0.3~1.0モル濃度を有する塩酸溶液を含む。本発明の更に別の実施態様は、カテーテルの微生物混入を阻害する方法に関する。この方法では、カテーテルの内腔に、0.3~1.0モル濃度を有する塩酸溶液を注入する。本発明の更に別の実施態様は、留置カテーテルの微生物混入を有する患者を治療する方法に関する。この方法では、カテーテルの内腔に、0.3~1.0モル濃度を有する塩酸溶液を注入する。本発明の更に別の実施態様は、カテーテルと0.3~1.0モル濃度を有する塩酸溶液とを含むカテーテルキットに関する。以上、本明細書の本発明の詳細な説明をよりよく理解し得るため、また、当該分野に対する本発明の貢献をよりよく評価し得るため、本発明の実施態様を、かなり広く概説した。もちろん、以下に記載し、かつ添付の特許請求の範囲の主題を形成する、本発明の更なる実施態様も存在する。この点、本発明の少なくとも1つの実施態様を詳細に説明する前に、本願では、本発明が、以下の記載で説明した、又は図面に示した、構成の詳細及び構成要素の組み合わせに限定されないことを理解すべきである。本発明は、説明した実施態様以外の実施態様が可能であり、様々な方法で実践及び実行できる。また、本明細書及び要約で使用される表現及び専門用語は、説明のために用いられ、限定とみなすべきではないということが理解されるべきである。そのため、当業者は、本開示の基礎となる概念が、本発明のいくつかの目的を実行するために、他の構造、方法及びシステムを設計するための基盤として容易に利用され得ることを理解するだろう。従って、特許請求の範囲は、本発明の趣旨及び範囲から逸脱しない限り、そのような均等の構成を含んでいるとみなされることが重要である。本発明の実施態様により、塩酸HClカテーテルロック溶液、HClカテーテルサルベージ溶液、カテーテル中の微生物の成長を阻害する方法、留置カテーテルの微生物混入を有する患者を治療する方法、及びカテーテルキットを提供する。様々な実施態様において、HClカテーテルロック溶液及び/又はHClカテーテルサルベージ溶液は、任意の適切な濃度を有していてもよい。一般的に、適切な濃度の具体例としては、単独で又は他の成分と組み合わせて抗菌性を発揮できる濃度が挙げられる。特に、適切なHClの濃度の具体例としては、0.3~1モル濃度Mの範囲が挙げられる。本明細書に示される他の具体例では、0.001Mのような低濃度のHClは、単独で又は他の成分と組み合わせて、抗菌カテーテルロック溶液及び/又は抗菌カテーテルサルベージ溶液として利用するのに適切であり得る。さらに、1Mよりも高いHCl濃度も、抗菌カテーテルロック及び/又は抗菌カテーテルサルベージ溶液として利用するのに適切であり得る。特定の具体例では、本明細書に開示するカテーテルロック溶液及び/又はカテーテルサルベージ溶液が、0.3M~1MHClの範囲にある。この濃度範囲で、HClは、60分未満で細菌及び酵母の双方を死滅させることができ、血液中のリン酸塩による急速な中性化により偶発的に流出されたとしても、全く全身作用を及ぼさない。血流中でロック溶液が漏出したり、偶発的に流出したとき、局所pHは、生理学的範囲、すなわち、pH7.38~7.42にとどまる。前記の他の抗菌ロック溶液と異なり、本発明において開示するHClカテーテルロック溶液及び/又はHClカテーテルサルベージ溶液は、迅速に作用し、1時間未満の滞留時間を要し、従って、カテーテル感染が疑わしい場合、有効なカテーテルサルベージ溶液として利用し得る。HClに加えて、他の適切な成分をカテーテルロック及び/又はカテーテルサルベージ溶液に含ませてもよいということは、本発明の当該実施態様及び他の実施態様の範囲内である。適切な成分の具体例としては、他の抗菌剤、消毒剤、抗菌ペプチド、抗血栓剤、線維素溶解剤、抗凝固剤特にヘパリン、抗炎症剤、抗疼痛剤、血管拡張剤、抗増殖剤、抗線維化剤、増殖因子、サイトカイン、抗体、ペプチド及びペプチド模倣剤、核酸、及び/又はこれらに類するものなどが挙げられる。本発明の様々な実施態様で使用するのに適した医療デバイスとしては、カテーテル、チューブなどであってもよい。本発明の実施態様で使用するのに適した他のデバイスとしては、幅広い抗菌antimicrobial活性スペクトル及び/又は抗真菌antifungal活性スペクトルを有することによって利益を享受するデバイス、例えば、血液、血液生成物、及び/又は線維素生成液、組織及び/又は生成物と干渉するデバイスなどが挙げられる。実験1:カテーテルロック/サルベージ溶液の調製2MHClの原液を、アメリカ合衆国15275ペンシルバニア州ピッツバーグのFisherScientific社から購入した。下記の表1に示すように、0.001M~2Mの様々なHCl濃度を有する100ミリリットル100mL溶液を、脱イオン水で調製した:実験2:最小阻害濃度MIC表1に示すHCl溶液を、水の代わりにミュラーヒントンブロスで調製した。それぞれの溶液のpHを測定し、MICの範囲検索のため、カンジダアルビカンスCalbicans、緑膿菌Paeruginosa及び黄色ブドウ球菌Saureusに対して試験した。微生物及びそのHClのMIC括弧内に対応するpHを記すは、以下の通りである:Calbicans=0.08M~0.1MHClpH2.07~1.93Paeruginosa=0.001M~0.02MpH7.33~4.06Saureus=0.02M~0.04MpH4.06~3.12実験3:死滅に要する時間分析によって決定される、浮遊微生物に対するHClの抗菌作用0.1MHCl又は0.2MHClのいずれかに暴露した後、浮遊微生物の培養物の死滅に要する時間を決定した。培養物は、6種の細菌及び1種の酵母を含んでいた。試験した6種の細菌株は、1SaureusSA;2KlebsiellapneumoniaeKP;3EscherichiacoliEC;4AcinetobacterbaumanniiAB;5PaeruginosaPA;及び6バンコマイシン耐性EnterococcusfaecalisEFであった。試験した酵母は、カンジダアルビカンスCAであった。浮遊微生物の培養物への暴露時間は、5、10、30及び60分であった。簡単に言えば、浮遊細菌の死滅に要する時間分析の手順は以下の通りである。48ウェルプレートのウェルに、それぞれ1mLのHCl溶液又は0.85生理食塩水である対照溶液を加え、106CFU/mL1ミリリットル当たりのコロニー形成単位の試験細菌を加えた。次に、各ウェルから10マイクロリットルμL画分を、5、10、30、60分で回収し、リン酸緩衝生理食塩水PBSで連続的に希釈した。10μlの各希釈液を、デイ/エングレイD/E中和寒天上に播種した。プレートを反転して、摂氏37度37°Cで24時間インキュベートした。次に、プレート当たりのコロニーの数を記録し、CFU/mLを決定した。各試験を3回実行した。0.2MHClの試験結果を図1に示す。図1に示すように、0.1MHClに暴露して10分以内に、試験した6種の細菌株全てを死滅した。図1に示されていないが、Calbicansを細菌試料と同じ方法で試験した。0.2MHClの暴露により、浮遊微生物は基本的に即座に死滅したが、0.2MHClで浮遊Calbicansを死滅させるためには、約2時間の暴露が必要であった。図2に示すように、HCl濃度を0.4Mに増大することによって、浮遊Calbicansを死滅させるのに要する時間は30分に短縮した。実験4:予め形成したバイオフィルムの根絶に要する時間によって決定される、HClの抗菌作用EcoliEC、KpneumoniaeKP、SaureusSA、バンコマイシン耐性EfaecalisEF、PaeruginosaPA、AbaumaniiAB及びCalbicansCAの予め形成したバイオフィルムを、ブロス、生理食塩水又は0.1M~0.5MHCl含有溶液のいずれかに5~60分暴露した。予め形成したバイオフィルムの根絶に要する時間を決定する手順は以下の通りである。滅菌14フレンチゲージFr二重内腔CARBOTHANE登録商標押出物CARBOTHANE登録商標は、熱可塑性ポリカーボネートであり、アメリカ合衆国44092オハイオ州ウィックリフのLubrizolAdvancedMaterials社の登録商標であるから5mm断片を切り出した。48ウェルマイクロタイタープレート微生物当たり1つにおいて、1mLの細菌成長用トリプチケースソイブロスTSB又は酵母成長用麦芽酵母ブロスYMBのいずれかでウェルを満たす。次に、滅菌鉗子を用いて、1つのカテーテル断片をプレートの各ウェルに入れて、1ウェルずつ微生物を添加した。次いで、100rpm1分当たりの回転数で振盪しながら、37°Cのインキュベーターで、24時間hrsプレートをインキュベートした。24時間後、カテーテル断片を培地から取り出し、TSB;YMB;生理食塩水;又は0.1M、0.2M、0.3M、0.4M又は0.5MHClのいずれかを1ml含む、別の48ウェルプレートに入れた。指定の時間で、断片を取り出し、各ウェルに1mlのD/Eブロスデイエングレイ中和ブロスを含む、別の48ウェルプレートに入れた。この48ウェルプレートを、適切な超音波浴に入れ、約50°Cで20分間超音波処理した。適切な超音波浴の具体例としては、VWR250HTアメリカ合衆国19380ペンジルベニア州ウェストチェスターのVWRInternational社製が挙げられる。一旦、超音波処理が完了したら、10μlの画分を取り出し、連続的にPBSで希釈した。10マイクロリットル10μlの各希釈液を、D/E中和寒天の表面に播種した。プレートを37°Cで24時間インキュベートし、プレート当たりのコロニーの数を記録し、CFU/mLを決定した。図3に示すように、0.1MHClに暴露して30分以内に、全ての細菌バイオフィルムを根絶した。図4に示すように、0.4Mよりも高い濃度のHClにより、酵母バイオフィルムを1時間未満で根絶した。実験5:HClロックが感染カテーテルをサルベージする能力15Fr、19センチメートルcmの血液透析カテーテルの動脈に連結する口arterialportを、YMB中の103CFUのCalbicansでロックしたプライマー量として生成物において特定された量で。カテーテルを、滅菌袋の中で、37°Cで24時間インキュベートした。その後、カテーテルを袋から取り出し、YMBを洗い流した。カテーテルをYMB又はHCl溶液のいずれかで再ロックした。30分のインキュベーション後、ロック溶液を取り出し、D/E寒天上に播種するために貯蔵した。カテーテルを断片に切り分け、5mLのD/Eブロスを含む15mLのコニカルチューブに移した。カテーテル断片を含むチューブを、20分間超音波処理した。ロック溶液及びカテーテル超音波処理液のそれぞれから、10μlを取り出し、連続的にPBSで希釈した。10μlの各希釈液を、D/E中和寒天の表面に播種した。プレートを反転し、37°Cで24時間インキュベートした。次に、プレート当たりのコロニーの数を記録し、CFU/mLを決定した。0.4MHCl溶液及び0.5MHCl溶液の両方とも、カテーテル中で24時間成長したカンジダバイオフィルムを30分以内に根絶することができた。表2に示すように、30分の処理期間後に回収したHClロック溶液、及びHClロックで処理したカテーテル断片は、いずれの微生物の存在も陰性であった。実験6:HClロックにより微生物移動を防止する15Fr、19cmの血液透析カテーテルの動脈及び静脈に連結する口の両方とも、YMB又は0.5MHClのいずれかでロックした各口でプライマー量として生成物において特定された量で。105CFUのCalbicansで植菌された20mLのヒト血漿を含む、滅菌100mLメスシリンダー中に、カテーテルを37°Cで24時間吊るした。24時間のインキュベーション中、血漿を撹拌し続け、カテーテルの先端が、シリンダーの底に接触するのを防止するように注意した。次に、ロック溶液を取り出し、連続的に希釈し、D/E寒天上に播種するために貯蔵した。カテーテルを断片に切り分け、5mLのD/Eブロスを含む、15mLのコニカルチューブに移した。カテーテル断片を含むチューブを20分間超音波処理した。ロック溶液及びカテーテル超音波処理液のそれぞれから、10μlを取り出し、連続的にPBSで希釈した。10μlの各希釈液を、D/E中和寒天の表面に播種した。プレートを反転し、37°Cで24時間インキュベートした。次に、プレート当たりのコロニーの数を記録し、CFU/mLを決定した。下記の表3に見られるように、0.5MHClを含む溶液により、感染した血漿からカテーテル内腔へのカンジダの移動を防止できた。上記と同様の実験において、ロックしたカテーテルを24時間血漿中に吊るした後、各カテーテルからロック溶液を回収し、カテーテル内腔の先端、中央、末端でpHを測定した。例えば、ロック用量が1mlである場合、それぞれ333μlの3つの画分を、先端中央末端と予めラベルした3つの別々のチューブに回収した。次に、各溶液のpHを測定した。表4に示すように、各HCl溶液は、ロックされたカテーテルの全長に亘り阻害的なpHを持続できた。実験7:HClロックの安全性ヒト血漿の通常のpHは7.38~7.42であり、7.38未満のpHは酸性が強すぎるし、7.42を超える血漿pHはアルカリ性が強すぎるAthertonJC2009AcidbasebalancemaintenanceofplasmapHAnaesthesiaandIntensiveCareMed10:557561。一部又は全部の量のHClロックが不注意にも血流に投与された場合、局所pHがどのように影響を受けるかを決定するため、20mLの未凝固血清を、様々なHCl濃度を有する0、20、40、100μL溶液に補給し、pH測定に供した。15Fr、24cmCANNON登録商標血液透析カテーテルに対するプライマー量は、5mLのHClであり、平均的なヒト血清量は2.5LであるCANNON登録商標は、アメリカ合衆国19810デラウェア州ウィルミントンのArrowInternationalInvestment社の登録商標である。従って、5mLの全ロック量が血流に流されたら、HClロック:血清の割合は、1:500となるだろう。下記の表5に示すように、HCl濃度が0.5Mよりも高い場合、pHの大幅な低下が、1:500の割合で観察された。実験8:抗菌カテーテル及びカテーテルに塗布された抗菌剤とのHClロックの相乗効果抗菌カテーテルで使用する抗菌剤とのHClの相乗効果は、抑制ゾーンZOI試験によって決定した。マルチルーメン中心静脈カテーテルCVCから、並びにリファンピン及びミノサイクリンを染み込ませたCVCRif/Minoから、1cm長のカテーテル断片を切り出した。Saureus及びPaeruginosaの培養を、ミュラーヒントンブロス中で開始した。それぞれの微生物に対して、0.5マックファーランド標準液を用いて、接種濃度を1×108CFU/mlに調整した。HClで処理していないか、又は様々なHCl濃度で処理した、ミュラーヒントン寒天プレートを準備した。微生物の密集菌叢を形成できる最も高いHCl濃度は、0.01Mであった。ブロス培養液に浸した滅菌綿棒を用いて、単一の微生物でプレートに筋をつけた。滅菌鉗子を用いて、比較対照及びRif/Minoカテーテルからの1cm長のカテーテル断片を、寒天に垂直方向に挿入した。プレートを37°Cで24時間インキュベートした。それぞれの試験を3回実行した。次に、抑制ゾーンZOIを、測径器を用いてミリメートルmm単位で測定し、それぞれの試験での3つのZOI測定を平均した。これらの試験結果を表6に示す。表6に示すように、HCl濃度が0.001Mを超えたとき、Saureus及びPaeruginosaに対して、相乗効果を観察した。希釈HCl単独では、0.01Mの濃度でさえ、ZOIを何ら測定できないので、これらの相乗効果は、少なくとも完全に予想に反するものであった。本発明の実施態様の利点としては、Rif/Minoカテーテル中でHClロック溶液を使用することにより、ロック溶液が体液に接触し希釈されるカテーテルの末端の、まさにその位置、その近傍、又はごく近傍で、抗菌性を提供することが挙げられる。例えば、Rif/MinoカテーテルをHClロック溶液の有無で比較すると、HClロック溶液が当初0.3MHClであるなら、体液で300:1に希釈したとき、依然として改善された抗菌性を観察し得る。実験9:抗菌剤、スルファジアジン銀SSD及び5-フルオロウラシル5FUとのHClロックの相乗効果抗菌剤、スルファジアジン銀SSD及び5-フルオロウラシル5FUとのHClの相乗効果を決定するための別の実験では、カービーバウアー抗菌試験法ディスク拡散抗菌感受性試験としても知られているによって、ミュラーヒントン寒天において様々なHCl濃度の存在下で、各化合物の部分阻害濃度FICを決定した。実験8に記載したように、寒天プレート並びにSaureus、Paeruginosa及びEnterobacteraerogenesEaerogenesの培養物を準備した。簡単に言えば、0.0001M~0.01Mの範囲にある、様々な量のHClを、ミュラーヒントン寒天に加え、室温で固化した。培養物を1×108CFU/mlに希釈した。256μg/mlのSSD及び5FUの原液を調製し、水で倍数希釈し、256ppm~0.125ppmの濃度範囲を得た。各試験溶液から、20μlをカービーバウアーディスク上に注ぎ、ディスクを5分間空気乾燥し、使用する鉗子を、寒天プレート上に適用した。プレートを37°Cで24時間インキュベートした。次に、測径器を用いてミリメートルmm単位で抑制ゾーンを測定した。各試験は3回実行した。Paeruginosa及びSaureusHClで処理されていないに対して、SSDのMICは、128ppmであると決定された。この濃度で、HClの存在下、試験したSSDは、下記の表7に示すように、0.001MよりもHCl濃度が高くなると、更なる抑制ゾーンの増大を引き起こした。表8に示すように、HClは、0.001Mを超えるHCl濃度で、Saureusに対して5-FUとともに相乗効果を示す。表9に示すように、0.01M濃度で、HClは、Eaerogenesに対して5FUの阻害を増大した。表7~9に示すように、HCl濃度が0.001Mを超えるとき、Saureus及びPaeruginosaに対して、相乗効果を観察した。HCl単独では、0.01Mの濃度でさえ、ZOIを何ら測定できないので、これらの相乗効果は、少なくとも完全に予想に反するものであった。本発明の実施態様の利点としては、SSD及び/又は5-FUとともに、HClロック溶液を使用することにより、希釈された場合でさえ、例えば、体液によって希釈された場合でさえ、抗菌性を提供することが挙げられる。SSD及び/又は5-FUを適切なカテーテルに含ませてもよい。使用の際、例えば、患者に挿入した場合、抗菌剤は、カテーテルから溶出し、カテーテルの表面、その表面の近傍及び/又はごく近傍で細菌コロニー形成を阻害し得る。本発明の様々な実施態様の利点としては、これらの抗菌剤が、HClと相乗的に作用し、更に微生物成長を阻害することが挙げられる。本発明の多くの特徴及び利点は、詳細な明細書から明らかであり、従って、本発明の真の趣旨及び範囲内にあるような、本発明の特徴及び利点を全て含むことが、添付の特許請求の範囲によって意図されている。さらに、数多くの修正及び変更が、当業者に容易に思いつくため、図示及び開示される明確な構成及び作用に本発明を限定するのは望ましくないし、従って、本発明の範囲内にある、全ての適切な修正及び均等物を使用してもよい。