植物におけるADPグルコースピロホスホリラーゼを構成するサブユニットのうち、イネにおけるAGPL1遺伝子がコードするサブユニットと配列類似性の高いサブユニットをコードする遺伝子を抑制するように改変した植物変異体。イネ以外の植物由来であることを特徴とする請求項1記載の植物変異体。上記AGPL1遺伝子は、配列番号2に示すアミノ酸配列を含むAGPaseサブユニットをコードすることを特徴とする請求項1記載の植物変異体。上記植物は単子葉植物であることを特徴とする請求項1記載の植物変異体。光合成余剰物質蓄積器官に含まれる可溶糖量が、改変前における同含量と比較して有意に高いことを特徴とする請求項1記載の植物変異体。植物におけるADPグルコースピロホスホリラーゼを構成するサブユニットのうち、イネにおけるAGPL1遺伝子がコードするサブユニットと配列類似性の高いサブユニットをコードする遺伝子を抑制するように改変する工程を含む、植物変異体の製造方法。イネ以外の植物由来であることを特徴とする請求項6記載の植物変異体の製造方法。上記AGPL1遺伝子は、配列番号2に示すアミノ酸配列を含むAGPaseサブユニットをコードすることを特徴とする請求項6記載の植物変異体の製造方法。上記植物は単子葉植物であることを特徴とする請求項6記載の植物変異体の製造方法。光合成余剰物質蓄積器官に含まれる可溶糖量が、改変前における同含量と比較して有意に高いことを特徴とする請求項6記載の植物変異体の製造方法。上記改変した後に後代植物を栽培し、可溶糖高蓄積との形質を固定した系統を選抜する工程を更に含む請求項6記載の植物変異体の製造方法。植物におけるADPグルコースピロホスホリラーゼを構成するサブユニットのうち、イネにおけるAGPL1遺伝子がコードするサブユニットと配列類似性の高いサブユニットをコードする遺伝子を抑制するように改変した植物変異体を用意し、当該植物変異体を光合成可能な条件下で生育させる、可溶糖の蓄積方法。イネ以外の植物由来であることを特徴とする請求項12記載の可溶糖の蓄積方法。上記AGPL1遺伝子は、配列番号2に示すアミノ酸配列を含むAGPaseサブユニットをコードすることを特徴とする請求項12記載の可溶糖の蓄積方法。上記植物は単子葉植物であることを特徴とする請求項12記載の可溶糖の蓄積方法。光合成余剰物質蓄積器官に含まれる可溶糖量が、改変前における同含量と比較して有意に高いことを特徴とする請求項12記載の可溶糖の蓄積方法。上記改変した後に後代植物を栽培し、可溶糖高蓄積との形質を固定した系統を選抜する工程を更に含む請求項12記載の可溶糖の蓄積方法。しかしながら、植物の種子以外の組織において、ショ糖等の可溶糖の含有量を制御する技術については知られていなかった。そこで、本発明は、植物の茎部に可溶糖を高蓄積させることができ、可溶糖含量の高い植物の製造を可能とする技術を提供することを目的とする。上述した目的を達成するため、本発明者等が鋭意検討した結果、植物において、特定のAGPase遺伝子を抑制することで茎部に可溶糖が高蓄積することを見いだし、本発明を完成するに至った。本発明は以下を包含する。1植物におけるADPグルコースピロホスホリラーゼを構成するサブユニットのうち、イネにおけるAGPL1遺伝子がコードするサブユニットと配列類似性の高いサブユニットをコードする遺伝子を抑制するように改変した植物変異体。2イネ以外の植物由来であることを特徴とする1記載の植物変異体。3上記AGPL1遺伝子は、配列番号2に示すアミノ酸配列を含むAGPaseサブユニットをコードすることを特徴とする1記載の植物変異体。4上記植物は単子葉植物であることを特徴とする1記載の植物変異体。5光合成余剰物質蓄積器官に含まれる可溶糖量が、改変前における同含量と比較して有意に高いことを特徴とする1記載の植物変異体。6植物におけるADPグルコースピロホスホリラーゼを構成するサブユニットのうち、イネにおけるAGPL1遺伝子がコードするサブユニットと配列類似性の高いサブユニットをコードする遺伝子を抑制するように改変する工程を含む、植物変異体の製造方法。7イネ以外の植物由来であることを特徴とする6記載の植物変異体の製造方法。8上記AGPL1遺伝子は、配列番号2に示すアミノ酸配列を含むAGPaseサブユニットをコードすることを特徴とする6記載の植物変異体の製造方法。9上記植物は単子葉植物であることを特徴とする6記載の植物変異体の製造方法。10光合成余剰物質蓄積器官に含まれる可溶糖量が、改変前における同含量と比較して有意に高いことを特徴とする6記載の植物変異体の製造方法。11上記改変した後に後代植物を栽培し、可溶糖高蓄積との形質を固定した系統を選抜する工程を更に含む6記載の植物変異体の製造方法。12植物におけるADPグルコースピロホスホリラーゼを構成するサブユニットのうち、イネにおけるAGPL1遺伝子がコードするサブユニットと配列類似性の高いサブユニットをコードする遺伝子を抑制するように改変した植物変異体を用意し、当該植物変異体を光合成可能な条件下で生育させる、可溶糖の蓄積方法。13イネ以外の植物由来であることを特徴とする12記載の可溶糖の蓄積方法。14上記AGPL1遺伝子は、配列番号2に示すアミノ酸配列を含むAGPaseサブユニットをコードすることを特徴とする12記載の可溶糖の蓄積方法。15上記植物は単子葉植物であることを特徴とする12記載の可溶糖の蓄積方法。16光合成余剰物質蓄積器官に含まれる可溶糖量が、改変前における同含量と比較して有意に高いことを特徴とする12記載の可溶糖の蓄積方法。17上記改変した後に後代植物を栽培し、可溶糖高蓄積との形質を固定した系統を選抜する工程を更に含む12記載の可溶糖の蓄積方法。本発明によれば、特定の遺伝子を抑制することで植物の茎部に可溶糖を高蓄積させることができ、可溶糖含量の高い植物を製造することができる。本発明を適用して製造された植物は、可溶糖を高含有するためバイオ燃料の原料として使用することができる。以下、本発明に係る可溶糖高含有植物の製造方法を詳細に説明する。本発明では、植物に可溶糖を高蓄積させるため、植物におけるAGPaseADPglucosepyrophosphorylaseADPグルコースピロホスホリラーゼを構成するサブユニットのうち、イネにおけるAGPL1遺伝子がコードするサブユニットと最も配列類似性の高いサブユニットをコードする遺伝子を抑制する。ここで、可溶糖とは、ショ糖、グルコース及びフルクトース等の水に溶解する糖の総称を意味する。したがって、可溶糖を高蓄積するとは、ショ糖、グルコース及びフルクトース等の糖成分のうちいずれか一成分が高蓄積している場合、複数成分が高蓄積している場合のいずれも含む意味である。また、高蓄積とは、対象の遺伝子を抑制する前の植物に含まれる可溶糖の蓄積量が、当該遺伝子の抑制の後において有意に向上していることを意味する。本発明において、遺伝子を抑制するとは、当該遺伝子を欠損させること、当該遺伝子の発現量を抑制又は減少させること、当該遺伝子によりコードされるタンパク質の機能を阻害することを含む意味である。遺伝子を欠損させるとは、当該遺伝子のコーディング領域の一部又は全部を含む領域を染色体より欠失させること、当該遺伝子のコーディング領域にトランスポゾン等を組み込むことで当該遺伝子を破壊すること意味する。また、遺伝子の発現量を減少させる方法としては、特に限定されないが、当該遺伝子の発現制御領域を改変して転写量を低減する方法、当該遺伝子の転写産物を選択的に分解する方法等を挙げることができる。本発明において遺伝子を抑制する手法としては、所謂、トランスポゾン法、トランスジーン法、転写後遺伝子サイレンシング法、RNAi法、ナンセンス仲介減衰NonsensemediateddecayNMD法、リボザイム法、アンチセンス法、miRNAmicroRNA法、siRNAsmallinterferingRNA法等を挙げることができる。本発明において抑制する遺伝子は、ADPグルコースピロホスホリラーゼを構成するサブユニットのうち、イネにおけるAGPL1遺伝子Os05g0580000と呼称される場合もあるがコードするサブユニットと最も配列類似性の高いサブユニットをコードする遺伝子である。すなわち、所定の植物において、AGPaseを構成するサブユニットとして複数のアイソマーが特定された場合、イネにおけるAGPL1遺伝子がコードするサブユニットと最も配列類似性の高いサブユニットをコードする遺伝子を抑制するように植物ゲノムを改変する。ここで、イネにおけるAGPL1遺伝子の塩基配列及びAGPL1遺伝子がコードするサブユニットのアミノ酸配列を、それぞれ配列番号1及び2に示す。ここで、配列類似性とは、BLAST、PSIBLAST、HMMERといった配列類似性検索ソフトウェアをデフォルトの設定で使用して2つのアミノ酸配列間の類似性を示す値として算出される値を意味する。本発明において抑制する遺伝子としては、配列番号2に示すアミノ酸配列に対する類似度が例えば70以上、好ましくは80以上、より好ましくは90以上、最も好ましくは95以上であるアミノ酸配列を有し、且つ、AGPaseのサブユニットをコードする遺伝子を挙げることができる。ここで、類似度の値は、BLASTBasicLocalAlignmentSearchToolプログラムを実装したコンピュータプログラム及び遺伝子配列情報を格納したデータベースを用いてデフォルトの設定で求められる値を意味する。また、換言すると、本発明において抑制する遺伝子は、イネ以外の植物であれば、イネにおけるAGPL1遺伝子の相同遺伝子と同義である。上記イネ以外の生物に由来する相同遺伝子は、特に限定されず、種々の生物に関する遺伝子配列を格納したデータベースを検索することで特定することができる。すなわち、配列番号1及び2に示した塩基配列やアミノ酸配列をクエリー配列として、例えばDDBJEMBLGenBank国際塩基配列データベースやSWISSPROTデータベースを検索し、公知のデータベースから容易に検索同定することができる。ここで、相同遺伝子とは、一般的に、共通の祖先遺伝子から進化分岐した遺伝子を意味しており、2種類の種の相同遺伝子オルソログortholog及び同一種内で重複分岐により生じた相同遺伝子パラログを含む意味である。換言すると、上述した相同遺伝子にはオルソログやパラログといった相同遺伝子を含む意味である。また、可溶糖を高蓄積するように、所定の植物の遺伝子を改変する場合、当該植物のゲノム情報が明らかになっていないならば、定法に従ってゲノムライブラリー又はcDNAライブラリーを作製し、イネにおけるAGPL1遺伝子の全部又は一部をプローブとしたハイブリダイゼーションにより抑制すべき遺伝子を特定することができる。なお、可溶糖を高蓄積するように改変する植物がイネである場合、抑制する遺伝子はAGPL1遺伝子となる。イネにおいてAGPaseを構成するサブユニットしては、AGPL1遺伝子、AGPL2遺伝子、AGPL3遺伝子及びAGPL4遺伝子の4種類が知られている。これらのうち、AGPL1遺伝子を抑制することで可溶糖を高蓄積するように形質が変化するが、その他の遺伝子を抑制したとしてもこのような形質変化を観察することはできない。後述の実施例に示すように、AGPL3遺伝子を抑制した植物変異体では、可溶糖の蓄積量については野性型とほぼ同等であることが示されている。AGPL3遺伝子の塩基配列及びAGPL3遺伝子がコードするサブユニットのアミノ酸配列を、それぞれ配列番号3及び4に示す。このような知見から、イネ以外の植物を、可溶糖を高蓄積するように改変する場合、配列番号1及び2に示したAGPL1遺伝子に関する塩基配列及びアミノ酸配列との配列類似性が、配列番号3及び4に示したAGPL3遺伝子に関する塩基配列及びアミノ酸配列との配列類似性よりも高い遺伝子を特定することが好ましい。このように、AGPL1遺伝子に関する塩基配列及びアミノ酸配列との配列類似性がより高い遺伝子を抑制することで、可溶糖を高蓄積できる形質を有する植物変異体を製造できることが後述の実施例より明らかに理解できる。ところで、可溶糖を高蓄積するように改変する植物としては、特に限定されず、如何なる植物であっても良い。対象となる植物としては、例えば、双子葉植物、単子葉植物、例えばアブラナ科、イネ科、ナス科、マメ科、ヤナギ科等に属する植物下記参照が挙げられるが、これらの植物に限定されるものではない。アブラナ科:シロイヌナズナ、アブラナBrassicarapa、Brassicanapus、キャベツ、ナタネBrassicarapa、Brassicanapus、チンゲンサイBrassicarapavarchinensis、カブBrassicarapavarrapa、ノザワナBrassicarapavarhakabura、ミズナBrassicarapavarlancinifolia、コマツナBrassicarapavarperuviridis、パクチョイBrassicarapavarchinensis、ダイコンBrassicaRaphanussativus、ワサビWasabiajaponicaなど。ナス科:タバコNicotianatabacum、ナス、ジャガイモSolaneumtuberosum、トマトLycopersiconlycopersicum、トウガラシCapsicumannuum、ペチュニアPetuniaなど。マメ科:ダイズ、エンドウPisumsativum、ソラマメViciafaba、フジWisteriafloribunda、ラッカセイArachishypogaea、ミヤコグサLotuscorniculatusvarjaponicus、インゲンマメPhaseolusvulgaris、アズキVignaangularis、アカシアAcaciaなど。キク科:キクChrysanthemummorifolium、ヒマワリHelianthusannuusなど。ヤシ科:アブラヤシElaeisguineensis、Elaeisoleifera、ココヤシCocosnucifera、ナツメヤシPhoenixdactylifera、ロウヤシCoperniciaなど。ウルシ科:ハゼノキRhussuccedanea、カシューナットノキAnacardiumoccidentale、ウルシToxicodendronvernicifluum、マンゴーMangiferaindica、ピスタチオPistaciaveraなど。ウリ科:カボチャCucurbitamaxima、Cucurbitamoschata、Cucurbitapepo、キュウリCucumissativus、カラスウリTrichosanthescucumeroides、ヒョウタンLagenariasicerariavargourdaなど。バラ科:アーモンドAmygdaluscommunis、バラRosa、イチゴFragaria、サクラPrunus、リンゴMaluspumilavardomesticaなど。ナデシコ科:カーネーションDianthuscaryophyllusなど。ヤナギ科:ポプラなど。フトモモ科:ユーカリなど。イネ科:トウモロコシ、イネ、オオムギHordeumvulgare、コムギTriticumaestivum、タケPhyllostachys、サトウキビSaccharumofficinarum、ネピアグラスPennisetumpupureum、エリアンサスErianthusravenae、ミスキャンタスススキMiscanthusvirgatum、ソルガムSorghumスイッチグラスPanicumなど。ユリ科:チューリップTulipa、ユリLiliumなど。なかでも、単子葉植物を対象として、可溶糖を高蓄積できる単子葉植物を製造することが好ましい。単子葉植物のなかでも、特に、イネ、コムギ、オオムギ、サトウキビやトウモロコシといったイネ科の植物を対象とすることが好ましい。特に、本発明を適用して所定の遺伝子を抑制した植物は、当該遺伝子を抑制していない元の植物と比較して、可溶糖を高蓄積するといった性質を示す。一般に、葉において光合成された糖成分可溶糖のうち余剰分は茎部等の光合成余剰物質蓄積器官に転流し、蓄積される。したがって、本発明を適用して所定の遺伝子を抑制した植物は、茎部等の光合成余剰物質蓄積器官に可溶糖を高蓄積するといった性質を示す。なお、イネにおいては葉鞘及び稈茎が光合成余剰物質蓄積器官として機能する。すなわち、イネにおいては、葉鞘及び稈茎に可溶糖を高蓄積することとなる。以上のように本発明に係る製造方法によれば、可溶糖を高蓄積できる植物を製造することができる。この植物は、可溶糖を高蓄積しているため、バイオ燃料の原料として有効に利用することができる。すなわち、本発明を適用した得られた植物は、可溶糖を高蓄積しているため、微生物を利用したバイオ燃料の製造に使用することができる。また、従来、シロイヌナズナやイネなどのモデル植物は、油脂やデンプンを蓄積する植物であって、上述したような器官であってもショ糖の蓄積量の変化を評価することが難しかった。本発明を適用して得られた植物は、茎部や葉鞘等の器官に可溶糖を高蓄積するため、当該器官に含まれる可溶糖の量を指標にすることで、ショ糖等の可溶糖を増産する植物や可溶糖の増産に起用する原因遺伝子をスクリーニングすることができる。さらに、従来、家畜の飼育には、稲わら等を利用した発酵粗飼料が使用されている。発酵粗飼料は、通常、稲わら等の植物に糖成分を添加して乳酸菌による乳酸発酵を行うことで調製されている。本発明を適用して得られた植物を発酵粗飼料の原料として使用する場合、上述のように乳酸発酵のための糖成分の添加が不要となる。上述のように可溶糖を高蓄積しているためである。このように、本発明を適用して得られた植物を利用することで、低コスト且つ高栄養価の家畜用発酵粗飼料を製造することができる。なお、葉鞘や茎部等の光合成余剰物質蓄積器官に蓄積した可溶糖を利用する場合、出穂前の植物を使用することが好ましい。植物の出穂期を過ぎると、光合成余剰物質蓄積器官に蓄積した可溶糖はショ糖のかたちで穂へ転流されるためである。その他の工程上述したように所定の遺伝子を抑制するように植物を改変した後、定法に従って後代植物を得ることができる。上記所定の遺伝子を抑制するように植物を改変することで獲得した可溶糖の高蓄積という形質を保持固定した後代植物を定法に従って得ることができる。なお、本発明における植物体とは、成育した植物個体、植物細胞、植物組織、カルス、種子の少なくとも何れかが含まれる。つまり、本発明では、最終的に植物個体まで成育させることができる状態のものであれば、全て植物体とみなす。また、上記植物細胞には、種々の形態の植物細胞が含まれる。かかる植物細胞としては、例えば、懸濁培養細胞、プロトプラスト、葉の切片等が含まれる。これらの植物細胞を増殖分化させることにより植物体を得ることができる。なお、植物細胞からの植物体の再生は、植物細胞の種類に応じて、従来公知の方法を用いて行うことができる。以下、実施例により本発明をより詳細に説明するが、本発明の技術的範囲は以下の実施例に限定されるものではない。本実施例では、イネをモデルとして、イネAGPaseを構成するサブユニットが破壊された変異株における可溶糖の蓄積能を検討した。本実施例では、イネAGPaseを構成するサブユニットのうち、AGPL1遺伝子がコードするサブユニットが破壊された変異株及びAGPL3遺伝子がコードするサブユニットが破壊された変異株を入手した。これら変異株は、イネ日本晴のTos17突然変異系統コレクションとして独立行政法人農業生物資源研究所から分譲された。本実施例では、以下の2系統のイネ種子の分譲を受けた。具体的には、独立行政法人農業生物資源研究所から割譲された、イネの内在性レトロトランスポゾンTos17を転移させて作成した変異体系統NF3982、NC7528及びNC0371のM1種子を温室内でポット栽培した。そして、幼植物の葉身からDNAを抽出し、PCR法によりNF3982ではAGPL1が、NF7528ではAGPL3が、NC0371ではISA3が欠損しているかどうか遺伝子型を確認した。DNA抽出は次のようにして行った。まず抽出バッファー1MKCl、100mMTrisHCl、10mMEDTA内で、マルチビーズショッカーを用いて破砕した葉身を70°Cで20分以上放置した。破砕した葉身を15000rpm、常温で10分間遠心し、上清150μlを同量のイソプロパノールに加えた。それを3000rpm、4°Cで30分間遠心し、沈殿を得た。得られた沈殿に70エタノール200μlを加え、3000rpm、4°Cで5分間遠心した。その後、上清を捨て、常温で1~2時間風乾した。風乾した沈殿を110TEに溶かしてPCRに用いた。PCRはTaKaRaMultiplexPCRAssayKitを用いて行った。反応条件は94°C60秒の後、94°C30秒58°C90秒72°C90秒を1サイクルとして35サイクル、その後、72°C10分とした。プライマーは表2で示したものを用い、各系統のForwardとReverse及び、Tos17tail3の3種を同時に使用した。遺伝子型の確認を行った植物体から得られたWTとKOホモのM2種子を播種し、各系統6個体ずつ15000aのポットで温室栽培し、これを糖デンプン濃度や酵素活性の測定に用いた。温室は明期が5時から19時の14時間、気温が明期27°C、暗期23°Cになるように制御した。糖デンプン濃度の測定はFキットJ.K.インターナショナル社を用い、マイクロプレート分光光度計VientoXS大日本住友製薬株式会社により測定した。まず液体窒素中ですり潰した供試材料約50mgに1000μlの80エタノールを加え、よく攪拌した。その後80°Cで10分間インキュベート後、10000rpm、常温で、5分間遠心し、上清を回収した。残った沈殿に500μlの80エタノールを加え同じ作業を行なった。このようにして得られた上清を遠心エバポレーターで乾燥し、500μlの蒸留水を加えよく攪拌した。これを15000rpm、4°Cで5分間遠心し、上清を抽出液として回収した。抽出液の各糖の濃度をFキットの測定操作法に従い測定し、式1により新鮮重あたりの糖濃度を算出した。式1:糖濃度×05新鮮重糖デンプン濃度に関する定量解析の結果を図1に示す。図1においてAGPL1遺伝子破壊株とはNF3982系統の変異体を意味し、AGPL3遺伝子破壊株とはNG7528系統の変異株を意味する。また、図1においてStはデンプン、Sucはショ糖、Glcはグルコース、Fruフラクトースであり、SGFはショ糖、グルコース及びフルクトースの合計、すなわち可溶糖を意味している。図1に示した結果より、AGPL1遺伝子を破壊した変異体では、葉鞘におけるショ糖の蓄積量が野生株と比較して2.4倍に増加し、且つ、葉鞘における可溶糖の蓄積量も野生型と比較して有意に増加していることが判る。また、AGPL1遺伝子を破壊した変異体では、葉鞘におけるデンプンの蓄積量が野性型と比較して大幅に低下していることが判る。一方、AGPL1遺伝子を破壊した変異体であっても、葉身におけるショ糖や可溶糖の蓄積量、デンプンの蓄積量は野生型とほぼ同等であった。また、AGPL3遺伝子を破壊した変異体では、葉鞘及び葉身のいずれにおいても、ショ糖などの可溶糖及びデンプンの蓄積量は野生型とほぼ同等であった。この結果から、イネにおいては、AGPaseを構成するサブユニットのうちAGPL1遺伝子がコードするサブユニットを破壊することで、葉鞘に可溶糖を高蓄積できることが明らかとなった。