"表現型の異なる複数種類の接着細胞が固定されている基板を用意する工程と、前記基板上において、培養液を一方向に流しながら、固定されている前記接着細胞を培養し、前記接着細胞のうち少なくとも1種類を細胞分裂させる工程と、を備える、接着細胞の分離方法。前記固定された接着細胞を培養する前に、前記接着細胞のうち少なくとも1種類の接着細胞と選択的に相互作用する特異的結合分子を前記基板上に配置する、請求項1に記載の接着細胞の分離方法。前記基板上の前記特異的結合分子を、前記培養液が流れる方向において濃度を勾配させて配置する、請求項2に記載の接着細胞の分離方法。前記特異的結合分子として、タンパク質及びその断片の少なくとも一方を用いる、請求項2または3に記載の接着細胞の分離方法。前記タンパク質として、細胞外マトリックス、膜タンパク質、抗体、及びケモカインからなる群から選ばれる少なくとも一種を用いる、請求項4に記載の接着細胞の分離方法。前記基板上において、前記各接着細胞の位置を特定する工程をさらに備える、請求項1~5のいずれか一項に記載の接着細胞の分離方法。前記各接着細胞の位置を特定した後、少なくとも1種類の接着細胞を、前記基板上から回収する工程をさらに備える、請求項6に記載の接着細胞の分離方法。前記接着細胞のうち少なくとも1種類として、iPS細胞を用いる、請求項1~7のいずれか一項に記載の接着細胞の分離方法。請求項1~8のいずれか一項に記載の接着細胞の分離方法を行うための分離装置であって、前記表現型の異なる複数種類の接着細胞を配置するための前記基板と、前記基板上において、前記培養液を一方向に流すためのポンプと、を備える、接着細胞の分離装置。前記ポンプが、電池で作動するものである、請求項9に記載の接着細胞の分離装置。しかしながら、特許文献1に記載の方法で分離している細胞は、造血幹前駆細胞などの浮遊細胞である。浮遊細胞は、培養液などの媒体中に浮遊して存在する。このため、浮遊細胞をローリングさせて基板上を移動させることができる。一方、繊維芽細胞などの接着細胞は、隣接する細胞または細胞外の物質と接着して存在している。このため、従来、接着細胞は、基板上をローリングしないものと考えられている。このような状況下、接着細胞を分離する方法が求められている。本発明は、接着細胞の分離方法を提供することを主な目的とする。本発明の接着細胞の分離方法は、表現型の異なる複数種類の接着細胞が固定されている基板を用意する工程と、基板上において、培養液を一方向に流しながら、固定されている接着細胞を培養し、接着細胞のうち少なくとも1種類を細胞分裂させる工程とを備える。固定された接着細胞を培養する前に、接着細胞のうち少なくとも1種類の接着細胞と選択的に相互作用する特異的結合分子を基板上に配置してもよい。基板上の特異的結合分子を、培養液が流れる方向において濃度を勾配させて配置してもよい。特異的結合分子として、タンパク質及びその断片の少なくとも一方を用いることが好ましい。タンパク質として、細胞外マトリックス、膜タンパク質、抗体、及びケモカインからなる群から選ばれる少なくとも一種を用いることが好ましい。基板上において、各接着細胞の位置を特定する工程をさらに備えることが好ましい。各接着細胞の位置を特定した後、少なくとも1種類の接着細胞を、基板上から回収する工程をさらに備えることが好ましい。接着細胞のうち少なくとも1種類として、iPS細胞を用いてもよい。本発明の接着細胞の分離装置は、上記の接着細胞の分離方法を行うための分離装置である。接着細胞の分離装置は、基板と、ポンプとを備える。基板は、表現型の異なる複数種類の接着細胞を配置するためのものである。ポンプは、基板上において、培養液を一方向に流すためのものである。ポンプは、電池で作動するものであることが好ましい。本発明によれば、接着細胞の分離方法を提供することができる。以下、本発明を実施した好ましい形態の一例について説明する。但し、下記の実施形態は、単なる例示である。本発明は、下記の実施形態に何ら限定されない。また、実施形態において参照する図面は、模式的に記載されたものである。本実施形態に係る接着細胞の分離方法においては、まず、表現型の異なる複数種類の接着細胞が固定されている基板を用意する。接着細胞は、固形組織由来の細胞であり、一般に、隣接する細胞または細胞外の物質と接着して存在している。接着細胞の具体例としては、内皮細胞、上皮細胞、神経細胞などが挙げられる。例えば、接着細胞に遺伝子を導入した場合、一般に、細胞ごとに遺伝子の導入効率発現効率は異なる。よって、例えば、1種類の接着細胞に遺伝子を導入することにより、表現型の異なる複数種類の接着細胞が得られる。また、iPS細胞誘導のような、人工的なリプログラミング操作において、繊維芽細胞などの接着細胞に対して、いわゆる山中4因子Oct3/4Sox2Klf4c-Mycをトランスフェクションまたはインフェクションした場合、1種類の接着細胞が、複数種類の接着細胞に誘導され得る。誘導された複数種類の接着細胞には、例えば、元の接着細胞の性質を色濃く残す細胞、iPS細胞へ誘導された細胞、iPS細胞からさらに分化した細胞、癌化した細胞などが含まれる。これらの接着細胞は、種類によって細胞分裂の頻度や表面抗原などの表現型が異なる。基板上には、以上のような表現型の異なる複数種類の接着細胞が固定されている。基板上に固定されている細胞は、遺伝子が導入されたものであってもよいし、遺伝子が導入されていないものであってもよい。また、基板上において、1種類の接着細胞を配置し、遺伝子を導入するなどして複数種類の接着細胞としてもよいし、複数種類の接着細胞を予め準備して基板上に配置してもよい。表現型の異なる複数種類の接着細胞を基板に固定する方法としては、表現型の異なる複数種類の接着細胞を基板上に静置する方法が挙げられる。接着細胞は、細胞外マトリックスなどにより、隣接する細胞または細胞外の物質と接着するため、接着細胞を基板上に静置する方法によって、接着細胞は基板上に容易に固定される。例えば、接着細胞と培養液とを、培養液中の接着細胞の濃度が1×10ml~1×104ml程度となるようにして混合し、得られた混合液を基板上に乗せ、静置することにより、接着細胞を基板上に固定することができる。接着細胞を基板上に静置して固定させるまでの時間は、接着細胞の種類などに応じて適宜調整できるが、3時間~48時間程度であることが好ましく、6時間~24時間程度であることがより好ましい。基板上に固定されなかった接着細胞は、培養液で洗い流すことができる。接着細胞が固定された基板上の位置は、顕微鏡などで確認しておくことが望ましい。また、基板の接着細胞を固定する表面とは反対側の表面には、基準線などを設けておくことが好ましい。接着細胞が固定された位置の記録には、市販の画像処理ソフトなどが使用できる。接着細胞を固定する基板は、樹脂、ガラスなどの透明材料により構成されていることが好ましい。基板が透明材料により構成されている場合、顕微鏡での接着細胞の観察が容易となる。樹脂としては、ポリスチレン樹脂、ポリメタクリル酸メチル樹脂などが挙げられる。なお、細胞毒性を軽減するために、樹脂に含まれる原料モノマーの含有量は、500ppm以下とすることが好ましい。基板上には、固定された接着細胞を培養する前に、接着細胞のうち少なくとも1種類の接着細胞と選択的に相互作用する特異的結合分子を配置してもよい。特異的結合分子の種類は、接着細胞の種類に応じて、適宜選択することができる。特異的結合分子としては、タンパク質及びその断片の少なくとも一方を用いることが好ましい。タンパク質としては、細胞外マトリックス、抗体、及びケモカインからなる群から選ばれる少なくとも一種を用いることが好ましい。細胞外マトリックスとしては、コラーゲン、プロテオグリカン、グリコサミノグリカン、フィブロネクチン、ラミニン、テオイシン、エンタクチン、エラスチン、フィブリンなどが用いられる。膜タンパク質としては、カドヘリン、インテグリン、ムチン様ファミリー、免疫グロビンスーパーファミリーなどが挙げられる。抗体としては、例えば、がん細胞を含む接着細胞の表面抗原に対する抗体が挙げられる。抗体の具体例としては、Ep-CAM抗体、N-カドヘリン抗体、ビメンチン抗体などの上皮がんに共通の表面抗原に対する抗体、HER2抗体などの乳がん特有の表面抗原に対する抗体、NS19-9抗体などの大腸がん特有の表面抗原に対する抗体、CD49、CD54,CD59抗体などの前立腺がん特有の表面抗原に対する抗体などが好ましく用いられる。ケモカインは、遊走性を有する接着細胞を用いる場合などに好ましく用いられる。特異的結合分子を基板上に配置する方法は、特に限定されない。特異的結合分子を基板上に配置する方法としては、例えば、基板のシラネートガラス面の-COOH基を特異的結合分子の-NH2基と反応させて、共有結合を形成する方法、基板表面にアビジンタンパク質を固定し、このアビジンタンパク質と、ビオチングループを含む特異的結合分子と反応させる方法などが挙げられる。特異的結合分子は、基板上の全面に配置してもよいし、一部にのみ配置してもよい。特異的結合分子は、基板上の接着細胞を固定する部分よりも、後述の培養液が流れる方向の下流側に位置する部分に配置してもよい。また、特異的結合分子を、培養液が流れる方向において濃度を勾配させて配置してもよい。例えば、特異的結合分子の濃度を、培養液が流れる方向に向かうに従って、徐々に低くしてもよい。また、特異的結合分子の濃度を、培養液が流れる方向に向かうに従って、徐々に高くしてもよい。また、特異的結合分子の濃度の高い部分と低い部分とが交互に位置するように、特異的結合分子を配置してもよい。このように、基板上の特異的結合分子に濃度勾配を設けることにより、高い濃度で全面処理を行う場合に比べて、基板上を移動する細胞の移動距離を延ばすことができ、細胞分別の精度をより高めることができる。次に、基板上において、培養液を一方向に流しながら、固定されている接着細胞を培養し、接着細胞のうち少なくとも1種類を細胞分裂させる。基板上において、培養液を一方向に流す方法は、培養液を特定の方向に流すことができる方法であれば、特に限定されない。培養液を一方向に流す方法としては、例えば、ポンプを用いる方法などが挙げられる。例えば、チューブポンプを用い、培養液を基板の一方側から供給し、他方側から吸引することによって、基板上において培養液を一方向に流すことができる。また、基板に傾斜をつけ、培養液を基板の一方側から供給して培養液を一方向に流してもよい。培養液の流れを安定させるために、基板に溝などを設けてもよい。培養液の流速は、培養液を流す基板の幅にもよるが、例えば、幅が15mmの場合には、5cc/時間~50cc/時間程度であることが好ましく、10cc/時間~30cc/時間程度であることがより好ましい。基板上に固定されている接着細胞を培養する環境は、接着細胞が細胞分裂できる環境であれば、特に限定されない。例えば、接着細胞が動物細胞である場合、一般に、37°Cの温度下、二酸化炭素濃度が5となるような環境で接着細胞を培養することができる。従来、接着細胞は、隣接する細胞または細胞外の物質と強く接着しているため、培養液を流す程度では、基板上に固定された接着細胞を移動させることはできないと考えられる。しかしながら、本発明者が検討した結果、培養液を一方向に流しながら、基板上に固定されている接着細胞を培養し、接着細胞を細胞分裂させることにより、基板上において、細胞分裂した接着細胞を選択的に培養液の流れの方向に移動させることができることが明らかとなった。基板上に固定された接着細胞が移動する機構の詳細は必ずしも明らかではないが、例えば、次のように考えることができる。すなわち、接着細胞は、通常、隣接する細胞または細胞外の物質と強く接着しているが、細胞分裂している間細胞周期のM期においては、接着細胞は、隣接する細胞または細胞外の物質と離れる。接着細胞が細胞外の物質などと離れている間は、接着細胞は、培養液の流れに沿って移動する。このため、基板上に固定された接着細胞を移動させることができると考えられる。基板上における接着細胞の移動速度と、培養液の流速とは、相関関係があると考えられる。さらに、接着細胞の細胞分裂の頻度は、接着細胞の種類によって異なる。例えば、図1及び図2に示されるように、接着細胞1が、基板2上の位置Aに固定されており、培養液を一方向x2側からx1側に流しながら、固定されている接着細胞1を培養している状態で、接着細胞1を細胞分裂させるとする。図1に示されるように、接着細胞1が、時間T1の間に2回細胞分裂する細胞である場合、時間T1の間に、接着細胞1は、細胞分裂を2回行う。すなわち、細胞分裂が2回行われているT1の間に、接着細胞1は、培養液の流れに沿って基板上の位置Cまで移動する。一方、図2に示されるように、接着細胞1が、時間T1の間に3回細胞分裂する細胞である場合、同様にして、接着細胞1は、細胞分裂が3回行われているT1の間に、培養液の流れに沿って基板上の位置Dまで移動する。このように、一定時間における細胞分裂の頻度が異なる複数種類の接着細胞を特定の位置に固定し、培養液を一方向に流しながら、接着細胞を細胞分裂させると、細胞分裂の頻度に応じて接着細胞の移動する距離が異なる。このため、各接着細胞の位置にずれが生じる。よって、表現型の異なる複数種類の接着細胞を分離することが可能となる。接着細胞の細胞周期を接着細胞の種類ごとに揃えることにより、より精密な分離が可能となる。接着細胞の細胞周期を揃える方法としては、同調培養などの方法が挙げられる。例えば、細胞周期の各期に適応した阻害剤を用いることにより同調培養を行うことができる。このような阻害剤としては、DNAポリメラーゼ阻害剤であるアフィジコリン、G1G2の細胞周期に作用するトリコスタチンやレプトマイシン、分裂期に作用するコルヒチンなどが挙げられる。接着細胞のうち少なくとも1種類の接着細胞と選択的に相互作用する特異的結合分子を基板上に配置することにより、特定の接着細胞を、特異的結合分子を配置した箇所に固定させることができる。このため、接着細胞の分離の精度を向上し得る。特異的結合分子を基板上の接着細胞を固定する部分よりも、培養液が流れる一方向側に位置する部分に配置することにより、移動した接着細胞を途中で動きにくくしたり、固定したりできる。移動した接着細胞を途中で動きにくくすることにより、各接着細胞の移動速度に差を付けやすくなり、各接着細胞の移動距離の差を制御しやすくなる。また、移動した接着細胞を途中で固定することにより、基板上の任意の位置で接着細胞を固定することができる。よって、接着細胞の分離の精度を向上し得る。基板上に培養液を流す時間は、接着細胞の種類などに応じて、適宜調整することができる。具体的には、基板上に培養液を流す時間は、各接着細胞の細胞分裂の頻度や細胞分裂に要する時間、接着細胞と特異的結合分子との相互作用の大きさなどに応じて調整することができる。基板上に培養液を流す時間は、5時間~5日間程度であることが好ましく、12時間~48時間程度であることがより好ましい。基板上において、各接着細胞の位置を特定する工程をさらに設けてもよい。各接着細胞の基板上の位置の特定には、位相差顕微鏡、微分干渉顕微鏡、偏光顕微鏡、蛍光顕微鏡の他に共焦点顕微鏡などの顕微鏡を用いることができる。また、基板上における各接着細胞の位置の記録には、市販の画像処理ソフトを用いることができる。顕微鏡及び画像処理ソフトを用いることにより、培養液を流す前後における接着細胞の位置の変化から、各接着細胞の移動速度や分布などを解析したり、特定の位置に存在する接着細胞の均一性などを観察することができる。各接着細胞の位置を特定した後、少なくとも1種類の接着細胞を、基板上から回収する工程をさらに設けてもよい。基板上から回収した接着細胞は、セルソーターなどを用いて詳細に観察することができる。なお、接着細胞を基板上から回収しなくてもよい。この場合、基板上の培養液の流れを止め、そのまま静置培養に切り替えて、各接着細胞を観察することができる。以上のような接着細胞の分離方法を行うための分離装置は、上記の基板と、上記のポンプとを含む。基板は、表現型の異なる複数種類の接着細胞を配置するためのものである。ポンプは、基板上において、培養液を一方向に流すためのものである。ポンプは、電池で作動するものであることが好ましい。電池で作動するポンプとしては、チューブポンプなどが挙げられる。ポンプが電池で作動することにより、分離装置が小型化でき、持ち運びが容易となる。分離装置の持ち運びが容易であると、クリーンベンチでの準備、インキュベータ内での培養、顕微鏡などでの接着細胞の観察などを容易に行うことができる。以下、本発明について、具体的な実験例に基づいて、さらに詳細に説明する。但し、本発明は、以下の実験例に何ら限定されるものではなく、その要旨を変更しない範囲において適宜変更して実施することが可能である。実験例1接着細胞として、CHO-K1チャイニーズハムスター卵巣細胞、シグマアルドリッチ社製品を使用した。CHO-K1は、3回継代後に、2500個mlの濃度まで下記の培養液で希釈して、CHO-K1の浮遊液とした。培養液として、MEMα製品番号135-15175、和光純薬株式会社製に対して、0.2μmのフィルターでろ過したウシ胎児血清FBS、biowest社製を10体積添加したものを使用した。基板として、25cm2のフラスココーニング社製製品番号430639の底面を用いた。基板に配置する特異的結合分子として、コラーゲン溶液PSC-1-100-100、株式会社ニッピ製を用いた。コラーゲン溶液を5mMの酢酸溶液で300倍に希釈した後、基板表面に30分間接触させ、次いで基板表面をリン酸緩衝整理食塩水PBSで洗浄し、乾燥させて、基板上にコラーゲンを配置した。基板の裏側から、マジックで基準線15mm、直線状を描いた。次に、CHO-K1の浮遊液約10μlを基準線の位置に配置した。フラスコを静かにインキュベータ内に移し、一晩培養を行うことで、CHO-K1を基板上に接着させ、固定した。基板上に固定されなかったCHO-K1を培養液で洗い流した後、固定されたCHO-K1の基板上の位置を、位相差顕微鏡オリンパス株式会社製のCKX41を用いて記録した。培養液を流すポンプとして、自立式送液ポンプ協和エンジニアリング株式会社製を用いた。この自立式送液ポンプは、2台のチューブポンプが乾電池を電源としてブラシレス直流モーターで駆動するものである。送液用のチューブにはテフロンPFAチューブ外径2mm、内径1mmを用いた。次に、クリーンベンチ内において、ガスバーナーでステンレス棒φ2mmを加熱し、ステンレス棒の加熱された部分をフラスコの上部に押し当てて、PFAチューブを通すための孔をフラスコの前後2カ所に設けた。これらの孔にPFAチューブをはめ込み、チューブポンプのスイッチを入れ培養液を一方向に流し始めた。送液量は、送液側、排液側ともに、15cc/時間とした。PFAチューブからの培養液の送液は、滴下の状態となるが、底面に落ちてからは、吸い込み側に向かって約15mmの幅で安定的に液が移動するのを確認した。その後、フラスコをクリーンベンチから、温度37°C、二酸化炭素濃度5に設定されたインキュベータ内へ移し、そのまま40時間、培養液を流し続けた。次に、フラスコをインキュベータから取り出し、位相差顕微鏡の側に移動させ、フラスコ内のCHO-K1の位置を確認した。その結果、CHO-K1が、基準線から約2mm、灌流の方向へ移動していることが明らかとなった。"