除菌対象物と下記一般式1で表される化合物とを接触させながら、該対象物に発光ダイオードから発生した光を照射することを特徴とする除菌方法。ただし、上記一般式1において、R1およびR4は、炭素数1~4の直鎖若しくは分岐の同一または異なるアルキレン基であり、R2およびR5は、水素原子、同一若しくは異なるハロゲン原子、炭素数1~4のアルキル基または炭素数1~4のアルコキシ基であり、R3は、炭素数2~12の直鎖または分岐のアルキレン基であり、R6は、炭素数1~18の直鎖または分岐のアルキル基であり、Zは、塩素原子、臭素原子、ヨウ素原子またはOSO2R7基R7は、炭素数1~4のアルキル基または置換若しくは無置換のフェニル基であるである。前記一般式1で表される化合物が、下記式2~5で表される少なくとも1種の化合物である請求項1に記載の除菌方法。前記光が、波長400nm~315nmのUVAである請求項1に記載の除菌方法。前記除菌対象物と前記一般式1で表される化合物との接触を、該化合物を溶解した水系で行う請求項1に記載の除菌方法。前記除菌対象物がコンタクトレンズである請求項1に記載の除菌方法。前記除菌対象物が、バイオフィルムが付着した物品である請求項1に記載の除菌方法。従って、本発明の目的は、1分子内にピリジニウム塩を2残基有するビス第四級アンモニウム塩化合物のみを用いて除菌を行う場合と比べて、該化合物の使用量を減らしても、同等の広い抗菌スペクトルを示し、優れた除菌効果を有する除菌方法を提供することにある。上記課題を達成するために、本発明者らは、鋭意研究を行い、1分子内にピリジニウム塩を2残基有するビス第四級アンモニウム塩化合物を使用することと、発光ダイオードから発生した光を除菌対象物に照射することとを組み合わせることにより、上記ビス第四級アンモニウム塩化合物の広い抗菌スペクトルと優れた除菌効果を維持しながら、該化合物の使用量を減らすことができることを見い出し、本発明を完成するに至った。すなわち、本発明によれば、除菌対象物と下記一般式1で表される化合物とを接触させながら、該対象物に発光ダイオードから発生した光を照射することを特徴とする除菌方法が提供される。ただし、上記一般式1において、R1およびR4は、炭素数1~4の直鎖若しくは分岐の同一または異なるアルキレン基であり、R2およびR5は、水素原子、同一若しくは異なるハロゲン原子、炭素数1~4のアルキル基または炭素数1~4のアルコキシ基であり、R3は、炭素数2~12の直鎖または分岐のアルキレン基であり、R6は、炭素数1~18の直鎖または分岐のアルキル基であり、Zは、塩素原子、臭素原子、ヨウ素原子またはOSO2R7基R7は、炭素数1~4のアルキル基または置換若しくは無置換のフェニル基であるである。また、本発明においては、前記一般式1で表される化合物が、下記式2~5で表される少なくとも1種の化合物であることが好ましい。また、本発明においては、前記光が波長400nm~315nmのUVAであること;前記除菌対象物と前記一般式1で表される化合物との接触を、該化合物を溶解した水系で行うこと;前記除菌対象物がコンタクトレンズであること;および、前記除菌対象物が、バイオフィルムが付着した物品であることが好ましい。本発明によれば、1分子内にピリジニウム塩を2残基有するビス第四級アンモニウム塩化合物のみを用いて除菌を行う場合と比べて、該化合物の使用量を減らしても、同等の広い抗菌スペクトルを示し、優れた除菌効果を有する除菌方法が提供される。以下に好ましい実施の形態を挙げて本発明をさらに詳細に説明する。なお、本発明において、除菌というときは、原核生物に加えて、真核生物であるかび、酵母、原生動物、アメーバなどの微生物の個体数を減少させることをいうものとする。また、本発明において、単に光というときは、可視光線のみならず、紫外線や赤外線を含む電磁波のことをいうものとする。本発明に使用する下記一般式1で表される1分子内にピリジニウム塩を2残基有するビス第四級アンモニウム塩化合物は、広い抗菌スペクトルを有する抗菌剤であり、上記特許文献2に記載の方法により合成することができる。ただし、上記一般式1において、R1およびR4は、炭素数1~4の直鎖若しくは分岐の同一または異なるアルキレン基であり、R2およびR5は、水素原子、同一若しくは異なるハロゲン原子、炭素数1~4のアルキル基または炭素数1~4のアルコキシ基であり、R3は、炭素数2~12の直鎖または分岐のアルキレン基であり、R6は、炭素数1~18の直鎖または分岐のアルキル基であり、Zは、塩素原子、臭素原子、ヨウ素原子またはOSO2R7基R7は、炭素数1~4のアルキル基または置換若しくは無置換のフェニル基であるである。上記一般式1で表される化合物は、抗菌性に優れ、水溶性が高く、生分解性生成物の毒性が低いため、抗菌剤として優れている。本発明においては、上記一般式1で表される化合物の中でも、下記式2~5で表される少なくとも1種の化合物を用いることが好ましい。上記式4で表される化合物は、100gの水に対する溶解度が589gと極めて高く、細菌、かび、酵母、原生動物等の微生物に対して高い除菌効果を有することに加え、ラット経口急性毒性が300mg/kg、変異原性陰性、皮膚感作性陰性などの高い安全性を有する化合物である。タマ化学工業株式会社からハイジェニア登録商標;CAS.No.851761-75-6として販売されているものを使用することができる。また、上記式2で表される化合物は、原生生物に対する除菌効果が優れている。本発明において、防菌対象物と一般式1の化合物とを接触させる方法としては、除菌対象物に一般式1の化合物の水溶液を噴霧することにより行ってもよく、一般式1の化合物を溶解した水系において接触させてもよい。例えば、一般式1の化合物の水溶液に、除菌対象物を浸すことにより接触させる。一般式1の化合物は水溶性が高く、容易に水溶液を調製することができる。上記接触を一般式1で表される化合物を溶解した水系で行う場合、該化合物の適切な濃度は、該化合物の構造や除菌対象の微生物に大きく依存する。以下、本発明の除菌方法において、一般式1で表される化合物として式4のハイジェニア登録商標を使用した場合について説明する。対象微生物がグラム陰性菌の場合、ごく微量でも除菌効果を発揮でき、例えば大腸菌では0.1μM以上で除菌効果が現われ、0.5μM程度で十分に強い除菌効果を得ることができる。コンタクトレンズの連続装用に関連する角膜炎の起炎菌である緑膿菌に対しては、0.05μM以上で除菌効果が現われ、3μM程度で十分に強い除菌効果を得ることができる。一方、グラム陽性菌の場合には、グラム陰性菌よりも高濃度とする必要がある。例えば、角膜炎の起炎菌として代表的な黄色ブドウ球菌Staphylococcusaureusに対しては、0.2μM以上で除菌効果が現われ、3μM程度で十分に強い除菌効果を得ることができる。感染性角膜炎の起炎菌として知られているカンジダアルビカンスCandidaalbicansに対しては、500μg/L以上で除菌効果が現われ、1mg/L程度で十分に強い除菌効果を得ることができる。近年、コンタクトレンズの装着に伴う感染性角膜炎の起炎菌として報告が増加しているアカントアメーバに対しては、栄養体とシスト体とで除菌効果が異なり、栄養体アメーバでは500μg/L以上で除菌効果が現われ、1mg/L程度で十分に強い除菌効果を得ることができるが、シスト体アメーバでは除菌効果を得るためには、3mg/L以上とすることが好ましく、10mg/L以上とすることがより好ましい。本発明では、除菌対象物と上記一般式1で表される化合物とを接触させながら、該対象物に発光ダイオードから発生した光を照射することにより除菌を行う。上記一般式1で表される化合物は、それ自体除菌能力を持つ化合物であるが、本発明者らは、それに発光ダイオードから発生した光を照射することにより、相乗的な除菌効果が現われることを見出した。言い換えると、発光ダイオードから発生した光の照射を組み合わせることにより、一般式1で表される化合物の除菌能力を格段に向上させることができる。例えば、本明細書の実施例で例示するように、上記化合物のみを使用した場合には、ほとんど除菌能力を発揮しないほどの低濃度としても、発光ダイオードから発生した光の照射を併用することにより、効果的な除菌を行うことができる。このため、除菌能力を落とさずに、上記化合物の使用量を減らすことが可能である。本発明者らは、発光ダイオード光の照射により除菌能力が向上する理由として、発光ダイオード光の照射による細胞内でのOHやH2O2などの活性酸素種の発生と式1で表される化合物の細胞膜破壊による酸素流入の促進に起因したOHやH2O2の発生が重なり、これらの相乗効果により一般式1で表される化合物の除菌能力が格段に向上するものと考えている。本発明に使用する発光ダイオードは、白色LEDを使用してもよいが、一般式1で表される化合物に光を照射したときに、活性酸素種が発生しやすい波長の光を放出するものが好ましい。具体的な波長としては、紫外線領域であることが好ましく、波長400~315nmのUVA領域の光であることがより好ましい。UVA領域の中でも、活性酸素種の発生効率の面から波長365nm付近の光が、本発明に最も適している。このような波長の光を放出する発光ダイオードの例として、波長400~315nmのUVAを発するUVA-LEDを挙げることができる。なお、上記一般式1で表される化合物は、285nm付近の光を吸収し、分解されやすいため、285nm付近の波長を含む光を避けることが好ましい。発光ダイオードは、その製造工程において水銀やハンダなどの環境負荷の高い物質が使用されず、また寿命が長く、省電力であることから環境に優しいという点で優れている。また、発光ダイオードは機械的強度が強く小型化が容易であるため、本発明の方法を実施するための装置を小型化できる点で有利である。さらにUVA波長は、紫外領域の中でも長波長であるため照射対象物への劣化作用が低い点でも有利である。発光ダイオードからの照射光の強度は、除菌対象物や除菌対象の微生物の種類により一概には言えないが、一例として除菌対象物の表面において20~2000μW/cm2となるような強度の光を照射する。本発明の除菌方法において、除菌対象物と一般式1で表される化合物とを接触させておく時間は、該化合物の濃度、除菌対象物、除菌対象の微生物の種類により異なり一概には言えないが、原核生物に対しては5分以上とすることが好ましく、10分~3時間程度とすることがより好ましい。真核生物に対しては、30分以上とすることが好ましく、1~24時間程度とすることがより好ましい。本発明の除菌方法においては、光を連続照射してもよいが、短い休止時間を設けて断続的に照射してもよい。本発明の除菌方法では、各種の工業製品や医療用機械器具を除菌対象物とすることができる。例えば、残留薬剤が懸念される食品工場生産ラインや医療用機械器具の殺菌に本発明の除菌方法を適用することにより、少量の抗菌剤使用による微生物殺菌が達成でき、また除菌廃液中の残留薬剤量が非常に少ないため、簡便な薬剤除去後、廃水の工業用水さらには上水への再利用も可能である。また、本発明の除菌方法は、ブドウ球菌、緑膿菌、カンジダ菌、アカントアメーバなどコンタクトレンズの装着に伴い引き起こされる角膜炎の起炎菌に対して顕著な除菌効果を発揮するため、コンタクトレンズの除菌に好適に適用できる。コンタクトレンズを除菌するための除菌剤としては、従来、塩化ベンザルコニウム以下、BACと略す。やポリヘキサメチレンビグアナイド以下、PHMBと略す。などが使用されてきた。しかし、一般式1で表される化合物はBACやPHMBと比べてもヒトに対する毒性が低く、さらに本発明の除菌方法では、上記化合物の使用量を、単独使用の場合と比べて大幅に減らすことができるので、安全性に優れている。また、発光ダイオードの照射装置は容易に小型化できるので、本発明の方法を実施するためのコンタクトレンズ用除菌装置は、例えば、1cm角程度に小型化することができる。また、本発明の除菌方法は、バイオフィルムが付着した物品の除菌にも適用できる。バイオフィルムには、原核生物である細菌をはじめ、かび、酵母、原生動物、アメーバなど種々の微生物が生息するが、本発明の除菌方法は、広い抗菌スペクトルを有するので、バイオフィルムに存在するこれらの種々の微生物を効果的に除菌することができる。このため、本発明によれば、居住空間においてバイオフィルムが発生しやすい、台所、トイレ、雨どい、上下水道管などの除菌やカテーテル、人工透析装置、入れ歯、コンタクトレンズなどのバイオフィルムが発生しやすい医療用機械器具の除菌に好適に使用することができる。以下、例を挙げて本発明を詳細に説明するが、これらによって本発明が限定されるものではない。<カンジダ菌CandidaalbicansNBRC1385菌液の調製>サブロー液体培地5mLを入れた試験管にカンジダ菌CandidaalbicansNBRC1385を植菌し、これを24時間、110min1の条件で振盪培養した。その後、6500rpm、4°Cでの遠心分離により集菌および生理食塩水を用いて2回洗菌したものを、滅菌済みのイオン交換水で再懸濁してカンジダ菌液を調製した。<アメーバAcanthamoebapolyphagaATCC30871の調製>1PYGC液体培地の調製プロテオースペプトンSigma5g、酵母エキスOXIOD5g、NaCl関東化学2.5gを450mLの蒸留水に溶解後、オートクレーブ滅菌し、室温まで冷却して第1液を調製した。D-グルコース関東化学5g、L-システインHCl0.475g関東化学を蒸留水35mLに溶解し、これに0.5MNa2HPO4関東化学水溶液10mLと0.5MKH2PO4関東化学水溶液5mLを加えて混和し、この溶液をろ過滅菌0.45μm、ADVANTECして第2液を調製した。第1液と第2液を混和し、ろ過滅菌済みの1NKOH水溶液または1NHCl水溶液でpH6.5±0.1に調整して第3液を調製した。ろ過滅菌済みの0.4MMgCl2関東化学水溶液2.5mLと0.4MCaCl2関東化学水溶液0.5mLを第3液に加え、PYGC液体培地を調製した。また、第1液のプロテオースペプトンと酵母エキスをそれぞれ2.5g、第2液のD-グルコース関東化学を2.5gとしたこと以外は上記PYGC液体培地と同様にして、1/2PYGC液体培地を調製した。2PAS培地Page’sAmoebaSalineの調製本実施例では、細胞内ATP量測定を行うために、可溶性有機物を添加しない培地を用いた。このための培地として、NaCl120mg、MgSO47H2O関東化学4mg、CaCl24mg、Na2HPO4142mg、KH2PO4136mgを蒸留水1000mLに溶解し、オートクレーブ滅菌したPage’sAmoebaSalinePASを使用した。3熱処理大腸菌懸濁液の調製Luria-Bertani培地バクトトリプトン10g、酵母エキス5.0g、NaCl5.0gを1Lにメスアップしたもの5mL中で前培養した大腸菌を、2000mL容の坂口フラスコ中に調製した2倍濃度NutrientBroth培地Difco;以下NB培地と略す。1000mLに加え、37°Cにおいて24時間振盪培養した。培養後の培地を450mL容遠心チューブに移し、6000rpm、4°C、10分間、遠心分離MODEL50A-7、佐久間製作所し、次いでPASで2回洗浄した後、PAS100mLに再懸濁した。この大腸菌懸濁液を500mLの三角フラスコに移し、70°C、90分間、振盪下90ストローク/分で熱処理を行った。急冷の後、懸濁液を25mL遠沈管に分注し、使用時まで-80°Cで保存した。4アメーバの前培養凍結保存シストアメーバを35°Cの水浴で解凍後、10mLのPYGC液体培地を分注した培養フラスコ培養面積25cm2、容量60mLに0.1mL接種し、25°Cで静置培養した。上清の汚れの程度に応じて培地を交換し、培養フラスコ底面に十分に増殖させて前々培養を行った。実験に使用するアメーバの前培養は、上記前々培養アメーバを培地交換した後、培養フラスコの底面をボルテックスミキサーで激しく振動20~30秒間し、剥離させて得たアメーバ懸濁液0.1mLを、1/2PYGC液体培地9.9mLとOD660≒4に調整した熱処理大腸菌0.1mLとを混合した培養フラスコに接種し、25°Cで4日間静置培養することにより行った。5栄養体アメーバ懸濁液の調製上記4にて前培養した培養液の上清を廃棄し、PAS10mLで培養フラスコ内を緩やかに洗浄した後、激しい振動によりアメーバを剥離させ、培養液を15mL遠沈管に入れて遠心分離により集菌2150rpm、4°C、5分間、himacCF7D2、HITACHIおよび洗浄2回を行い、10mLPASで再懸濁した。所期の栄養体アメーバ細胞数に血球計数盤depth0.1mm、1/400pmm、Thomaを使用し、PASで2×105cells/mLに調整した。6シストアメーバの調製上記5で調製した栄養体アメーバを、シスト形成培地KCl0.7g、CaCl20.8g、MgSO47H2O0.8gを蒸留水1000mLに溶解後、オートクレーブ滅菌中に2×105cells/mLとなるように添加してアメーバ懸濁液を調整した。シスト形成培地0.9mLを分注した48穴マイクロプレートに上記アメーバ懸濁液0.1mLを接種し、25°Cで8日間静置培養することによりシスト化させた。<カンジダ菌CandidaalbicansNBRC1385に対する暴露試験>[実験例1]滅菌イオン交換水で2×106cells/mLに調製したカンジダ菌液20mLを、深底90mmシャーレに入れた。これに、終濃度が1mg/Lになるようにハイジェニアタマ化学工業株式会社溶液を添加後、50mmの距離からUVA-LEDを連続照射しながら、30°Cで静置培養した。菌液中の生菌数をハイジェニアの添加から0、1、3、6時間後に測定した。結果を図2に黒丸●で示す。ハイジェニアおよびUVAの暴露開始から1時間後には生菌数は10分の1に急減し、開始から6時間後には約100分の1にまで減少した。なお、UVAの照射は、100×300mm2の基板に9直列×3並列で365nmLEDを備えた装置を用いて行ったサン電子工業株式会社製作。光源部から50mmの距離における照射強度は628μW/cm2であった。本実験例で使用したUVA照射装置の模式図を図1に示す。また、当該UVA照射装置の発光スペクトルを図10に実線で示す。生菌数の測定は、0.7Tween80入り生理食塩水で菌液を10倍段階希釈し、各希釈液100μLを0.7Tween80入りサブロー寒天培地に塗布し、48時間、30°Cで培養後、コロニーを計数することにより行った。[実験例2]ハイジェニアに代えて10塩化ベンザルコニウム溶液和光純薬工業;以下BACと略す。を終濃度が1mg/Lになるように添加したこと以外は実験例1と同様にして実験を行った。結果を図2に逆黒三角▼で示す。BACとUVAの暴露から1時間後には生菌数が約6分の1に減少したが、その後は6時間を経過するまで生菌数に大きな変化は見られなかった。[実験例3]UVAを照射しなかったこと以外は実験例1と同様にして実験を行った。結果を図2に白丸○で示す。ハイジェニアの暴露から1時間後には生菌数が約6分の1に減少し、6時間後には20分の1に減少した。[実験例4]UVAを照射しなかったこと以外は実験例2と同様にして実験を行った。結果を図2に逆三角▽で示す。BACの暴露から1時間後には生菌数が約6分の1に減少したが、その後は6時間を経過するまで生菌数に大きな変化は見られなかった。[実験例5]ハイジェニア溶液を添加しなかったこと以外は実験例1と同様にして実験を行った。結果を図2に黒三角▲で示す。実験開始から6時間経過後に至るまで生菌数に大きな変化は見られなかった。[実験例6]コントロール実験として、ハイジェニア溶液の添加も、UVA照射もしないこと以外は実験例1と同様にして実験を行った。結果を図2に×で示す。実験開始から時間の経過とともにわずかに生菌数が増加した。実験例1~6の結果から、カンジダ菌に対しては、ハイジェニアとUVA-LEDとの併用により、除菌作用について優れた相乗効果がみられた。特に、ハイジェニアのみを使用した場合実験例3に比べてUVA-LEDを併用することで、6時間後における生菌数が5分の1に減少し、ハイジェニアとUVA-LEDの併用による殺真菌性の相乗効果が示された。<栄養体アメーバAcanthamoebapolyphagaATCC30871に対する暴露試験>[実験例7]48穴マイクロプレートIWAKIに、上記5で調製した2×105cells/mLの栄養体アメーバ懸濁液0.1mL、上記3で調製した熱処理大腸菌懸濁液を、最終OD660が0.08になるように0.1mLおよびPAS0.75mLを分注し、アメーバ定着のため2時間静置した後、終濃度が1mg/Lとなるようにハイジェニアタマ化学工業株式会社製溶液を0.05mL添加した。実験例1と同じUVA照射装置を用いて、50mmの距離からUVA-LEDを連続照射しながら、プレートを25°Cで静置培養した。ハイジェニアの添加から0、1、3および6時間後に後述する手順にて浮遊アメーバおよび付着アメーバ由来のATP量を測定し、両者の和をアメーバ生細胞由来の全ATP量とした。結果を図3に黒丸●で示す。ATP量は、ハイジェニアおよびUVAの暴露開始から急激に減少し、6時間後には約71分の1にまで減少した。なお、ATP測定は、薬剤不活化剤としてTween80を終濃度が0.5w/vとなるように0.2mL添加し、30分静置後に行った。ATP測定試薬は、抗菌試験用発光測定試薬セットキッコーマン株式会社製を使用し、測定機器は、ルミネッセンスリーダーBLR-201アロカを使用した。浮遊アメーバ由来のATP量測定まず、各ウェルから上清を静かに除き、得られた上清0.9mLをルミチューブに分注し、これにATP消去試薬0.1mLを加えよく攪拌した。次いで、この溶液を別のルミチューブ3本に0.1mLずつ分注後、20分間静置することにより細胞外ATPを消去した。消去後、ATP抽出試薬を0.1mL加えよく攪拌し、30秒間の抽出時間後、発光試薬を0.1mL加え、30秒間積算の発光量から検量線PAS溶媒で作成、検出限界9.52×102pmol/Lにより浮遊アメーバ由来のATP量を算出した。付着アメーバ由来のATP量測定上清を除いた各ウェルにPAS0.36mLおよびATP消去試薬0.04mLを加え、20分間静置して細胞外ATPを消去した。次に、ATP抽出試薬を0.4mL加えて混合し30秒間抽出した後、各ウェルから溶液を吸い取り、これをルミチューブ3本に0.2mLずつ分注し、発光試薬0.1mLを加え、浮遊アメーバ由来のサンプルと同様の手順にて付着アメーバ由来のATP量を算出したPAS溶媒で検量線作成、検出限界9.52×102pmol/L。データには示さないが、本測定法で含有する熱処理大腸菌由来のATP発光量は検出限界以下であった。[実験例8]ハイジェニアに代えてBACを終濃度が1mg/Lになるように添加したこと以外は実験例7と同様にして実験を行った。結果を図3に逆黒三角▼で示す。ATP量は、BACおよびUVAの暴露開始から急激に減少し、6時間後にはハイジェニアUVAの実験例7と同程度の約63分の1にまで減少した。[実験例9]UVAを照射しなかったこと以外は実験例7と同様にして実験を行った。結果を図3に白丸○で示す。ハイジェニアの暴露から3時間後にはATP量が約3分の1に減少し、6時間後には約11分の1に減少した。[実験例10]UVAを照射しなかったこと以外は実験例8と同様にして実験を行った。結果を図3に逆三角▽で示す。BACの暴露から時間の経過とともに穏やかにATP量が減少し、6時間後には4分の1に減少した。[実験例11]ハイジェニア溶液の代わりにPAS0.05mLを添加したこと以外は実験例7と同様にして実験を行った。結果を図3に黒三角▲で示す。実験開始から時間の経過とともにATPが減少し、6時間後には40分の1に減少した。[実験例12]コントロール実験として、ハイジェニア溶液の代わりにPAS0.05mLを添加し、UVA照射をしないこと以外は実験例7と同様にして実験を行った。結果を図3に×で示す。実験開始から6時間経過後までATP量の変化はわずかであった。以上、実験例7~12の栄養体アメーバに対する暴露試験の結果から、BACまたはハイジェニアを単独で用いた場合と比較して、UVA-LED照射を併用することでより強い殺アメーバ効果が得られることが示された。UVA-LED併用時の抗菌剤としてBACを用いた場合とハイジェニアの場合とでは殺アメーバ効果に大きな差はみられなかった。しかし、ハイジェニアはBACと比較して溶血毒性、皮膚感作性などの毒性が低いことから、コンタクトレンズの洗浄などの医療器具洗浄の用途において有利である。なお、UVA-LED単独使用の場合と比べ、BACまたはハイジェニアを併用した際の6時間後におけるATP量は、それぞれ63、56に減少した。<シスト体アメーバに対する暴露試験抗菌剤濃度3mg/L>[実験例13]上記6で調製したシスト体アメーバからシスト形成培地を除いた後、各ウェルにPAS1mLを添加してウェルを穏やかに洗浄し、次いで、PAS0.95mLと、終濃度が3mg/Lとなるようにハイジェニア溶液を0.05mL添加した。実験例1と同じUVA照射装置を用いて、50mmの距離からUVA-LEDを連続照射しながら、プレートを25°Cで静置培養した。ハイジェニアの添加から0、1、3および6時間後に実験例7と同様の手順にて浮遊および付着シスト由来のATP量を測定し、両者の和をアメーバ生細胞由来の全ATP量とした。結果を図4に黒丸●で示す。ATP量は、ハイジェニアおよびUVAの暴露開始から減少し、6時間後には11分の1にまで減少した。[実験例14]ハイジェニアに代えてBACを終濃度が3mg/Lになるように添加したこと以外は実験例13と同様にして実験を行った。結果を図4に逆黒三角▼で示す。ATP量は、BACおよびUVAの暴露開始から減少し、6時間後には約17分の1にまで減少した。[実験例15]UVAを照射しなかったこと以外は実験例13と同様にして実験を行った。結果を図4に白丸○で示す。ハイジェニアの暴露から6時間後にはATP量が約2分の1に減少した。[実験例16]UVAを照射しなかったこと以外は実験例14と同様にして実験を行った。結果を図4に逆三角▽で示す。BACの暴露によるATP量の変化は少なく、6時間後ATP量は、実験開始直後の97程度であった。[実験例17]ハイジェニア溶液の代わりにPAS0.05mLを添加したこと以外は実験例13と同様にして実験を行った。結果を図4に黒三角▲で示す。実験開始から時間の経過とともにATPが減少し、6時間後には約7分の1に減少した。[実験例18]コントロール実験として、ハイジェニア溶液の代わりにPAS0.05mLを添加し、UVA照射をしないこと以外は実験例13と同様にして実験を行った。結果を図4に×で示す。実験開始から6時間経過後までATP量の変化はわずかであった。以上、実験例13~18のシスト体アメーバに対する暴露試験の結果から、BACまたはハイジェニアを単独で用いた場合と比較して、UVA-LED照射を併用することでシスト体アメーバに対するより強い殺アメーバ効果が得られることが示された。UVA-LED併用時の抗菌剤としてBACを用いた場合とハイジェニアの場合とでは殺アメーバ効果に大きな差はみられなかった。しかし、ハイジェニアはBACと比較して溶血毒性、皮膚感作性などの毒性が低いことから、コンタクトレンズの洗浄などの医療器具洗浄の用途において有利である。なお、UVA-LED単独使用の場合と比べ、BACまたはハイジェニアを併用した際の6時間後におけるATP量は、それぞれ41、64に減少した。<シスト体アメーバに対する暴露試験抗菌剤濃度1mg/L>[実験例19~24]ハイジェニアとBACの終濃度を1mg/Lとしたこと以外は実験例13~18と同様にして、それぞれATP量の測定を行った実験例19~24。結果を図5に示す。これらの結果から、抗菌剤濃度が1mg/Lでは、ハイジェニア、BACともに単独ではシスト体アメーバに対する殺アメーバ効果は弱く、UVA-LEDと併用しても殺アメーバ効果の併用効果は確認できなかった。<大腸菌EscherichiacoliNBRC12713に対する暴露試験>[実験例25]大腸菌EscherichiacoliNBRC12713を、Luria-Bertani培地バクトトリプトン10g、酵母エキス5.0g、NaCl5.0gを1Lにメスアップしたもの5mLを入れた試験管中で17時間、110min1にて振盪培養して前培養した。前培養液を6500rpm、4°Cで集菌および生理食塩水で2回洗菌し、滅菌イオン交換水で再懸濁し、2×106cells/mLに調製した。この大腸菌菌液20mLを、深底90mmシャーレに入れ、次いで、終濃度が0.3μMになるようにハイジェニアタマ化学工業株式会社溶液を添加後、実験例1と同じUVA照射装置を用いて、50mmの距離からUVA-LEDを連続照射しながら、30°Cで静置培養した。菌液中の生菌数をハイジェニアの添加から0、10、30および60分後に測定した。結果を図6に黒丸●で示す。ハイジェニアおよびUVAの暴露開始から30分後には生菌数は10分の1に急減し、開始から60分後には約1万分の1にまで減少した。なお、生菌数の測定は、0.7Tween80入り生理食塩水で菌液を10倍段階希釈し、各希釈液100μLをSCDLP寒天培地に塗布し、24時間、37°Cで培養後、コロニーを計数することにより行った。[実験例26]UVAを照射しなかったこと以外は実験例25と同様にして実験を行った。結果を図6に白丸○で示す。生菌数はハイジェニアの暴露から緩やかに減少し、60分後には生菌数が約7分の1となった。[実験例27]ハイジェニア溶液を添加しなかったこと以外は実験例25と同様にして実験を行った。結果を図6に黒三角▲で示す。実験開始から60分後には生菌数が100分の1まで減少した。[実験例28]コントロール実験として、ハイジェニア溶液の添加も、UVA照射もしないこと以外は実験例25と同様にして実験を行った。結果を図6に×で示す。実験開始から60分の間での生菌数の変化はなかった。実験例25~28の結果から、大腸菌に対しては、ハイジェニアとUVA-LEDとの併用により、除菌作用について優れた相乗効果がみられた。特に、ハイジェニアのみを使用した場合実験例26に比べてUVA-LEDを併用することで、60分後における生菌数が1000分の1以下となり、ハイジェニアとUVA-LEDの併用による殺菌性の相乗効果が示された。<緑膿菌PseudomonasaeruginosaATCC10145に対する暴露試験>[実験例29]緑膿菌PseudomonasaeruginosaATCC10145を、100mLの三角フラスコに入れた20mLのNB培地中で17時間、147min1にて振盪培養して前培養した。前培養液を6500rpm、4°Cで集菌および生理食塩水で2回洗菌し、滅菌イオン交換水で再懸濁し、2×106cells/mLに調製した。この緑膿菌菌液20mLを、深底90mmシャーレに入れ、次いで、終濃度が0.05μMになるようにハイジェニアタマ化学工業株式会社溶液を添加後、実験例1と同じUVA照射装置を用いて、50mmの距離からUVA-LEDを連続照射しながら、30°Cで静置培養した。菌液中の生菌数をハイジェニアの添加から0、10、30および60分後に測定した。結果を図7に黒丸●で示す。ハイジェニアおよびUVAの暴露開始から30分後には生菌数は37分の1に急減し、開始から60分後には検出限界以下10cells/mL未満にまで減少した。なお、生菌数の測定は、0.7Tween80入り生理食塩水で菌液を10倍段階希釈し、各希釈液100μLをSCDLP寒天培地に塗布し、24時間、37°Cで培養後、コロニーを計数することにより行った。[実験例30]UVAを照射しなかったこと以外は実験例29と同様にして実験を行った。結果を図7に白丸○で示す。60分間のハイジェニアの暴露では生菌数の変化は認められなかった。[実験例31]ハイジェニア溶液を添加しなかったこと以外は実験例29と同様にして実験を行った。結果を図7に黒三角▲で示す。実験開始から60分後には生菌数が770分の1まで減少した。[実験例32]コントロール実験として、ハイジェニア溶液の添加も、UVA照射もしないこと以外は実験例29と同様にして実験を行った。結果を図7に×で示す。実験開始から60分の間での生菌数の変化はなかった。実験例29~32の結果から、緑膿菌に対しては、ハイジェニアとUVA-LEDとの併用により、除菌作用について優れた相乗効果がみられた。特に、ハイジェニアのみを使用した場合実験例30の生菌数は、コントロールと大きな差は見られなかったにもかかわらず、ハイジェニアとUVA-LEDを併用することで、UVA-LEDの照射のみの場合と比べても、生菌数は100分の1以下の検出限界以下に減少し、指数関数的減少を伴った相乗的除菌効果が示された。<黄色ブドウ球菌StaphylococcusaureusNBRC12732に対する暴露試験>[実験例33]黄色ブドウ球菌StaphylococcusaureusNBRC12732を、Luria-Bertani培地5mLを入れた試験管中で、で17時間、110min1にて振盪培養して前培養した。前培養液を6500rpm、4°Cで集菌および生理食塩水で2回洗菌し、滅菌イオン交換水で再懸濁し、2×106cells/mLに調製した。この黄色ブドウ球菌菌液20mLを、深底90mmシャーレに入れ、次いで、終濃度が3μMになるようにハイジェニアタマ化学工業株式会社溶液を添加後、実験例1と同じUVA照射装置を用いて、50mmの距離からUVA-LEDを連続照射しながら、30°Cで静置培養した。菌液中の生菌数をハイジェニアの添加から0、10、30および60分後に測定した。結果を図8に黒丸●で示す。ハイジェニアおよびUVAの暴露開始から30分後には生菌数は100分の1に急減し、開始から60分後には5000分の1まで減少した。なお、生菌数の測定は、0.7Tween80入り生理食塩水で菌液を10倍段階希釈し、各希釈液100μLをSCDLP寒天培地に塗布し、24時間、37°Cで培養後、コロニーを計数することにより行った。[実験例34]UVAを照射しなかったこと以外は実験例33と同様にして実験を行った。結果を図8に白丸○で示す。ハイジェニアの暴露から10分後には生菌数が100分の1まで激減し、60分後には生菌数が約3000分の1となった。[実験例35]ハイジェニア溶液を添加しなかったこと以外は実験例33と同様にして実験を行った。結果を図8に黒三角▲で示す。実験開始から緩やかに生菌数は減少し、60分後には生菌数が10分の1となった。[実験例36]コントロール実験として、ハイジェニア溶液の添加も、UVA照射もしないこと以外は実験例33と同様にして実験を行った。結果を図8に×で示す。実験開始から60分の間での顕著な生菌数の変化はなかった。実験例33~36の結果から、黄色ブドウ球菌に対しては、ハイジェニアとUVA-LEDとの併用による殺菌について相乗効果は認められなかった。そして、UVA-LEDによる黄色ブドウ球菌に対する殺菌効果は、大腸菌や緑膿菌と比較すると、明らかに低かった。従って、黄色ブドウ球菌の殺菌には、ハイジェニアの添加が有効であることが分かった。<緑膿菌PseudomonasaeruginosaATCC10145バイオフィルムに対する暴露試験>[実験例37]緑膿菌PseudomonasaeruginosaATCC10145を、100mLの三角フラスコに入れた20mLのNB培地中で17時間、147min1にて振盪培養して前培養した。前培養液を6500rpm、4°Cで集菌および生理食塩水で2回洗菌し、滅菌イオン交換水で再懸濁し、これをR2A培地でOD660=0.0172.0×107cells/mLに調製し、それを6.7×106cells/mLに希釈したものを、48穴マイクロプレート平底、非コーティングポリスチレン製、滅菌済み、IWAKIの各ウェルに1mLずつ分注し、30°C、5日間静置培養することにより、プレート壁にバイオフィルムを形成させた。バイオフィルムを形成した48穴マイクロプレートのウェル中から培地を除き、滅菌済みのイオン交換水で1回洗浄し、風乾させた。次いで、滅菌済みイオン交換水0.8mLをウェルに加え、終濃度が0.05μMになるようにハイジェニアタマ化学工業株式会社溶液を0.2mL添加後、実験例1と同じUVA照射装置を用いて、50mmの距離からUVA-LEDを連続照射しながら、30°Cで1時間静置培養した。バイオフィルムでの生菌数を確実に評価するため、上清における生菌数と、プレート壁に吸着したバイオフィルム表層および内部の生菌数を計数した。上清については、ウェル中の上清を試験管へ移し、プレートを風乾させた。その上清を0.7Tween80入り生理食塩水で希釈してから、SCDLP寒天培地に塗布し、24時間培養後にコロニーカウントを行った。一方、風乾したウェルについては、0.7Tween80入り生理食塩水を1mL加え、ウェルの底と壁を十分にピペッティングし、0.7Tween80入り生理食塩水で希釈後、上清と同様の手順にてコロニーカウントを行った。結果を図9に棒グラフ左端で示す。網掛け棒を上清における生菌数、白色棒をバイオフィルム表層および内部の生菌数とした。ハイジェニアおよびUVAの暴露開始から60分後には上清生菌数は10cells未満、吸着生菌数は100cells未満までに急減した。なお、R2A培地は、ペプトン0.5g、酵母抽出物0.5g、カザミノ酸0.5g、グルコース0.5g、可溶性デンプン0.5g、K2HPO40.3g、MgSO47H2O0.05g、ピルビン酸ナトリウム0.3gを1Lにメスアップし、pH7.0~7.4としたものを使用し、UVAの照射は実験例1と同じ装置を用いて行った。[実験例38]UVAを照射しなかったこと以外は実験例37と同様にして実験を行った。結果を図9に棒グラフ左から2番目で示す。網掛け棒を上清における生菌数、白色棒をバイオフィルム表層および内部の生菌数とした。コントロール生菌数右端と比較し、ハイジェニアの暴露による生菌数の著しい変化は、60分暴露間では認められなかった。[実験例39]ハイジェニア溶液を添加しない代わりに滅菌イオン交換水0.2mLを加えたこと以外は実験例37と同様にして実験を行った。結果を図9に棒グラフ左から3番目で示す。網掛け棒を上清における生菌数、白色棒をバイオフィルム表層および内部の生菌数とした。UVAの暴露開始から60分後には上清生菌数は、約1000分の1まで減少し、一方吸着生菌数は10cells未満までに急減した。[実験例40]コントロール実験として、ハイジェニア溶液を添加しない代わりに滅菌イオン交換水0.2mLを加え、UVA照射もしないこと以外は実験例37と同様にして実験を行った。結果を図9に棒グラフ右端で示し、網掛け棒を上清における生菌数、白色棒をバイオフィルム表層および内部の生菌数とした。実験開始から60分後の生菌数は、上清においては108オーダー、バイオフィルムにおいては107オーダーであった。実験例37~40の結果から、バイオフィルムを形成した緑膿菌に対しては、ハイジェニアとUVA-LEDとの併用により、除菌効果について優れた相乗効果がみられた。特に、ハイジェニアのみを使用した場合実験例38に比べてUVA-LEDを併用することで、60分暴露後における生菌数は激減し、ハイジェニアとUVA-LEDの併用による強い殺菌性の相乗効果が示された。<大腸菌EscherichiacoliNBRC12713に対する白色LED暴露試験>[実験例41]実験例25と同様の手順にて、2×106cells/mLの大腸菌菌液を調製した。この大腸菌菌液20mLを、深底90mmシャーレに入れ、次いで、終濃度が0.3μMになるようにハイジェニアタマ化学工業株式会社溶液を添加後、70mmの距離から白色LEDを連続照射しながら、30°Cで静置培養した。菌液中の生菌数をハイジェニアの添加から0、10、30、60分後に測定した。結果を図11に黒丸●で示す。ハイジェニアおよび白色LEDの暴露開始から30分後には生菌数は10分の1に減少し、開始から60分後には100分の1にまで減少した。なお、白色LEDの照射は、100×300mm2の基板に9直列×3並列で白色LEDを備えた装置を用いて行ったサン電子工業株式会社製作。光源部から70mmの距離における照射強度は890μW/cm2であった。UVA-LED照射実験では、光源部と菌液との距離を50mmとしたが、白色LED照射実験では、放熱により生菌数に影響が及ぶことを避けるため、光源部と菌液との距離を70mmとした。本実験例では、白色LED照射装置として、図1のUVA照射装置と同様の構成のものを使用した。当該白色LED照射装置の発光スペクトルを図10に点線で示す。生菌数の測定は、実験例25と同様に行った。[実験例42]白色LEDを照射しなかったこと以外は実験例41と同様にして実験を行った。結果を図11に白丸○で示す。生菌数はハイジェニアの暴露から緩やかに減少し、60分後には生菌数が約7分の1となった。[実験例43]ハイジェニア溶液を添加しなかったこと以外は実験例41と同様にして実験を行った。結果を図11に三角△で示す。実験開始から60分後には生菌数が約4分の1に減少した。[実験例44]コントロール実験として、ハイジェニア溶液の添加も、白色LED照射もしないこと以外は実験例41と同様にして実験を行った。結果を図11に×で示す。実験開始から60分の間での生菌数の変化はなかった。実験例41~44の結果から、大腸菌に対して、ハイジェニアと白色LEDとの併用により、除菌効果について相乗効果がみられた。特に、ハイジェニアのみを使用した場合実験例42に比べて白色LEDを併用することで、60分後における生菌数が約14分の1以下となり、ハイジェニアと白色LEDとの併用による殺菌性の相乗効果が示された。<カンジダ菌CandidaalbicansNBRC1385に対する暴露試験>[実験例45]滅菌イオン交換水で2×106cells/mLに調製したカンジダ菌液20mLを、深底90mmシャーレに入れた。これに、終濃度が20mg/Lになるように式2化合物溶液を添加後、50mmの距離からUVA-LEDを連続照射しながら、30°Cで静置培養した。菌液中の生菌数を式2化合物の添加から0、1、3、6時間後に測定した。結果を図12に黒丸●で示す。式2化合物およびUVAの暴露開始から1時間後には生菌数は1000分の1に急減し、開始から3時間後には不検出となった。なお、UVAの照射と生菌数の測定は、実験例1と同様の手順にて行った。[実験例46]UVAを照射しなかったこと以外は実験例45と同様にして実験を行った。結果を図12に白丸○で示す。式2化合物の暴露から1時間後には生菌数が約10分の1に減少し、その後は生菌数に大きな変化はなかった。[実験例47]式2化合物を添加しなかったこと以外は実験例45と同様にして実験を行った。結果を図12に黒三角▲で示す。実験開始から6時間経過後に至るまで生菌数に大きな変化は見られなかった。[実験例48]コントロール実験として、式2化合物の添加も、UVA照射もしないこと以外は実験例45と同様にして実験を行った。結果を図12に×で示す。実験開始から時間の経過とともにわずかに生菌数が増加した。実験例45~48の結果から、カンジダ菌に対しては、式2化合物とUVA-LEDとの併用により、除菌作用について非常に強い相乗効果がみられた。特に、式2化合物のみを使用した場合実験例46に比べてUVA-LEDを併用することで、6時間後には生菌数を不検出まで減少させ、式2化合物とUVA-LEDの併用による殺真菌性の相乗効果が示された。<大腸菌EscherichiacoliNBRC12713に対する暴露試験>[実験例49]滅菌イオン交換水で調整した2×106cells/mLの大腸菌EscherichiacoliNBRC12713菌液20mLを、深底90mmシャーレに入れた。次いで、終濃度が4.5μMになるように式2化合物溶液を添加後、実験例1と同じUVA照射装置を用いて、50mmの距離からUVA-LEDを連続照射しながら、30°Cで静置培養した。菌液中の生菌数を式2化合物の添加から0、10、30および60分後に測定した。結果を図13に黒丸●で示す。式2化合物およびUVAの暴露開始から30分後には生菌数は5分の1に急減し、開始から60分後には約1万分の1近くまで減少した。なお、生菌数の測定は、実験例25と同様の手順にて行った。[実験例50]UVAを照射しなかったこと以外は実験例49と同様にして実験を行った。結果を図13に白丸○で示す。生菌数は式2化合物の暴露から緩やかに減少し、60分後には生菌数が約3分の1となった。[実験例51]式2化合物を添加しなかったこと以外は実験例49と同様にして実験を行った。結果を図13に黒三角▲で示す。実験開始から60分後には生菌数が100分の1まで減少した。[実験例52]コントロール実験として、式2化合物溶液の添加も、UVA照射もしないこと以外は実験例49と同様にして実験を行った。結果を図13に×で示す。実験開始から60分の間での生菌数の変化はなかった。実験例49~52の結果から、大腸菌に対しては、式2化合物とUVA-LEDとの併用により、除菌作用について優れた相乗効果がみられた。特に、式2化合物のみを使用した場合実験例50に比べてUVA-LEDを併用することで、60分後における生菌数が1000分の1以下となり、式2化合物とUVA-LEDの併用による殺菌性の相乗効果が示された。<緑膿菌PseudomonasaeruginosaATCC10145に対する暴露試験>[実験例53]滅菌イオン交換水で懸濁した2×106cells/mLの緑膿菌PseudomonasaeruginosaATCC10145菌液20mLを、深底90mmシャーレに入れた。次いで、終濃度が0.05μMになるように式2化合物溶液を添加後、実験例1と同じUVA照射装置を用いて、50mmの距離からUVA-LEDを連続照射しながら、30°Cで静置培養した。菌液中の生菌数を式2化合物の添加から0、10、30および60分後に測定した。結果を図14に黒丸●で示す。式2化合物およびUVAの暴露開始から30分後には生菌数は83分の1に急減し、開始から60分後には検出限界以下10cells/mL未満にまで減少した。なお、生菌数の測定は、実験例29と同様の手順にて行った。[実験例54]UVAを照射しなかったこと以外は実験例53と同様にして実験を行った。結果を図14に白丸○で示す。60分間の式2化合物の暴露では生菌数の変化は認められなかった。[実験例55]式2化合物溶液を添加しなかったこと以外は実験例53と同様にして実験を行った。結果を図14に黒三角▲で示す。実験開始から60分後には生菌数が770分の1まで減少した。[実験例56]コントロール実験として、式2化合物溶液の添加も、UVA照射もしないこと以外は実験例53と同様にして実験を行った。結果を図14に×で示す。実験開始から60分の間での生菌数の変化はなかった。実験例53~56の結果から、緑膿菌に対しては、式2化合物とUVA-LEDとの併用により、除菌作用について優れた相乗効果がみられた。特に、式2化合物のみを使用した場合実験例54の生菌数は、コントロールと大きな差は見られなかったにもかかわらず、式2化合物とUVA-LEDを併用することで、UVA-LEDの照射のみの場合と比べても、生菌数は100分の1以下の検出限界以下に減少し、指数関数的減少を伴った相乗的除菌効果が示された。