ヒナゲシ抽出物を含有することを特徴とする、IgA分泌促進剤。請求項1に記載のIgA分泌促進剤を乾燥重量に換算して0.01~90含有することを特徴とする医薬組成物。経口摂取されることを特徴とする請求項2に記載の医薬組成物。舌下投与により摂取されることを特徴とする請求項2に記載の医薬組成物。経鼻投与により摂取されることを特徴とする請求項2に記載の医薬組成物。請求項1に記載のIgA分泌促進剤を含有することを特徴とする食品。請求項1に記載のIgA分泌促進剤を含有することを特徴とする医薬組成物。上記課題に鑑みて、本発明は、腸内のみならず口腔や気道でもIgA分泌促進作用を有する医薬組成物を提供することを目的とする。本発明者らは、鋭意研究の結果、ヒナゲシ抽出物にIgA分泌促進作用があることを見出し、もって本発明を完成させた。本発明のヒナゲシ抽出物は、腸内におけるIgA分泌促進効果のみならず、口腔や気道においてもIgA分泌促進作用を有し、そのため、これを摂取することによりウイルスや細菌への感染を抑制し、また、アレルギーの発生を予防することができる。本発明でIgA分泌促進作用が認められたヒナゲシ学名:PapaverrhoeasLはケシ科の植物で別名を虞美人草という。鎮静、催眠、止痛作用等があるといわれ、鎮咳薬や鎮静剤として用いられる。ハーブを含む免疫賦活剤に関する特許特許文献11にハーブの一例としてポピーの記載があるものの、発明の具体性に欠け、IgAに関する記載もない。また、本発明で使用するヒナゲシ抽出物は、ヒナゲシの花や葉茎、好ましくはヒナゲシの花を、水、または水と親水性有機溶媒との混合物を使用して、抽出することが可能である。抽出の方法や溶剤の種類は特に限定されない。溶剤としては、水の他にエタノール、メタノール、プロパノール、グリセリン、プロピレングリコール等のアルコール類や、エーテル、アセトン、酢酸エチル、クロロホルム、ヘキサン等の有機溶剤またはこれらを組み合わせたものを用いることができる。ただし、安全性の面から水、エタノールもしくはその混合溶液を用いて抽出することが望ましい。抽出物を得るための抽出条件としては、高温、室温、低温のいずれかの温度で抽出することが可能であるが、40~90°Cで0.5~5時間程度が好ましい。抽出物は溶液状のまま使用することも可能であるが、さらに濾過して抽出溶剤を留去したあとに減圧乾燥や凍結乾燥により粉末状としたものや、または濃縮したものを使用することができる。また、これらの抽出物を有機溶剤分画、カラムクロマトグラフィー等により分画精製したものを使用することもできる。更には、脱臭、脱色等の精製処理を加えても良い。ヒナゲシ抽出物の含有量としては特に限定されることはないが、飲食物又は製剤に対し、乾燥重量に換算して0.01重量以上、好ましくは0.1~90重量含むことが好ましい。ヒナゲシ抽出物の摂取方法も特に限定されることはなく、経口摂取、舌下投与による摂取、経鼻投与による摂取、皮下や血管内等の局所への直接投与等、あらゆる公知の方法によることが可能である。本発明のヒナゲシ抽出物を含む医薬組成物は、例えば、医薬品、医薬部外品又は飲食品等として利用することができる。医薬品の場合、経口剤として投与される。経口剤の剤形としては、錠剤、カプセル剤、散剤、シロップ剤、ドリンク剤等が挙げられる。医薬部外品の場合、錠剤、カプセル剤、ドリンク剤等の剤形で利用される。飲食品の場合、ドリンク等の飲料品、キャンディ、せんべい、クッキー等の食品のほか、タバコやチューインガム等の嗜好品、飼料や飼料類、又はうがい薬、歯磨き等の化粧品類等が挙げられる。なお、これらはあくまでも例示にすぎず、本発明はいかなる物品にも用いることができる。医薬品や医薬部外品の場合、薬理学的に許容される一種または二種以上の担体、さらに必要に応じて他の治療のための有効成分を含有していてもよい。そのほか、賦形剤、結合剤、崩壊剤、滑沢剤、分散剤、界面活性剤、可塑剤、懸濁剤、乳化剤、希釈剤、緩衝剤、抗酸化剤、細菌抑制剤等を含有していてもよい。また、飲食品には、食品製造上許容される基材、担体、賦形剤、添加剤、増量剤、着色剤、香料等を含有していてもよい。なお、ヒナゲシ抽出物以外の成分に関しても、上記に限定されることはなく、本発明は公知のいかなる成分をも任意に含有していてもよい。本発明のヒナゲシ抽出物を含有する医薬品、医薬部外品又は飲食品等は、それぞれの技術分野において公知の任意の方法により製造することができる。その製造過程において、ヒナゲシ抽出物を公知のいかなる方法で添加してもよい。なお、本発明のヒナゲシ抽出物を含有する医薬組成物は、ヒトだけでなく、ヒト以外の動物以下、非ヒト動物と略すに対しても使用することができる。非ヒト動物としては、ほ乳類、は虫類、両生類、魚類等、ヒト以外の動物をあげることができる。以下に、実施例を用いて本発明について説明するが、これらの実施例はなんら本発明の範囲を限定するものではない。熱水抽出物の調製ヒナゲシ花100gを粉砕した後、試料の重量に対して10倍量の水を加えて70°Cで2時間抽出した。不溶物を濾過した後、抽出液を凍結乾燥して熱水抽出物37.5gを得た。パイエル板由来リンパ球細胞を用いたIgA抗体産生促進作用のインビトロ評価マウスBALB/c系、雌、6週齢の小腸を摘出し、パイエル板を採取して2ウシ胎児血清FCSを含むRPMI1620培地に浸した。ハサミでパイエル板を裁断し、セルストレーナーBDBiosciences製、孔径70μmでリンパ球細胞を回収した。回収した細胞懸濁液を遠心分離し、上清を吸引除去した後、completemediumを加えてリンパ球細胞懸濁液の細胞濃度を4×106cells/mlに調整した。completemediumには10FCS、50μM2-メルカプトエタノール、1mMピルビン酸ナトリウム、100U/mlペニシリン、100μg/mlストレプトマイシンを含むRPMI1620培地を用いた。96穴プレートの各ウェルにリンパ球細胞懸濁液と試料を溶解した培養培地試料は終濃度で100ppmとなるように調整を0.05mlずつ加え、37°C、5CO2の条件で1週間培養した。培養液を回収して遠心分離した後、上清中の総IgA抗体量をサンドイッチELISA法により測定した。試料を添加せずに培養した対照の総IgA抗体量を1とし、試料を添加して培養した場合の総IgA抗体量を相対値として算出した。サンドイッチELISA法による総IgA抗体量の測定上記サンドイッチELISA法による測定は以下の手順により行った。1μ/mlの抗マウスイムノグロブリン抗体溶液を96穴ELISAプレートに100μlずつ入れ、4°Cで一晩反応させて抗体をプレートに吸着させた。プレートから溶液を除去し、1bovineserumalbuminBSAを含むphosphatebufferedsalinePBSを180μlずつ入れて室温で1時間インキュベートして目的外タンパク質の非特異的な吸着をブロッキングした。0.05Tween20を含むPBSPBSTで各ウェルを洗浄後、試料溶液を加えて室温で2時間インキュベートした。PBSTで各ウェルを洗浄し、ペルオキシダーゼ結合抗マウスIgA抗体を各ウェルに25ngずつ加えて室温で1時間インキュベートした後、ペルオキシダーゼ基質を加えて2分間反応させた。0.5N塩酸を加えて反応を停止させ、450nmの吸光度を測定した。標準物質としてマウスIgA抗体を用いて検量線を作製し、IgA抗体量を測定した。結果は表1に示す通りであり、ヒナゲシ花熱水抽出物を培地に100ppmの濃度で添加した場合の培地中IgA抗体量は、何も加えない場合の2.6倍であった。マウスへの反復混餌投与によるIgA分泌促進作用の評価-1普通飼料MFオリエンタル酵母にヒナゲシ花熱水抽出物を5w/w混合した試験飼料を調製した。7週齢のマウスBALB/c系6匹を対照群と試験群各群3匹に分け、対照群には普通飼料、試験群には試験飼料を自由摂取させて6週間飼育した。飼育開始から1週間毎に糞便を回収し、それぞれ100mg/mlの濃度となるようにリン酸緩衝液に懸濁させ、遠心分離した後、上清中の総IgA抗体量を実施例2と同様にサンドイッチELISA法で測定した。結果は、各個体の0週における総IgA抗体量を1とした場合の相対値で表2に示した。平均値で比較すると、糞便中総IgA抗体量の相対値は対照群に比べて投与群のほうが高値であった。マウスへの反復混餌投与によるIgA分泌促進作用の評価-2普通飼料MFオリエンタル酵母にヒナゲシ花熱水抽出物を5w/w混合した試験飼料を調製した。7週齢のマウスBALB/c系12匹を対照群と試験群各群6匹に分け、対照群には普通飼料、試験群には試験飼料を自由摂取させて飼育した。4週目に50μgのホスホリルコリン-keyholelimpethemocyaninPC-KLH、細菌に共通の抗原を経鼻投与して免疫した。その後も1週間毎に経鼻免疫し、3回目の経鼻免疫から1週間後に鼻腔粘液100~200μl/匹及び鼻腔粘膜固有層リンパ球細胞1×105~5×105cells/匹を回収し、総IgA抗体量及び総IgA抗体産生細胞数、PC特異的IgA抗体価及びPC特異的IgA抗体産生細胞数を測定した。また、糞便を回収し、100mg/mlの濃度となるようにリン酸緩衝液に懸濁させ、遠心分離した後、上清中の総IgA抗体量を測定した。総IgA抗体量及びPC特異的IgA抗体価の測定はサンドイッチELISA法で、PC特異的IgA抗体産生細胞数の測定はenzyme-linkedimmunospotELISPOT法で行った。尚、各動物から採取できる鼻腔粘膜固有層リンパ球細胞の数は非常に少ないため、3匹分の細胞を一つにまとめて2連でIgA抗体産生細胞数の測定を行った。サンドイッチELISA法によるIgA抗体量の測定上記総IgA抗体量の測定は実施例2と同様にサンドイッチELISA法により行った。また、上記PC特異的IgA抗体量の測定は、最初にELISAプレートに吸着させる抗マウスイムノグロブリン抗体の代わりにPC-BSAを用いたほかは実施例2と同様にしてサンドイッチELISA法により行った。ELISPOT法によるIgA抗体産生細胞数測定上記ELISPOT法によるPC特異的IgA抗体産生細胞数測定は以下の手順により行った。市販の96穴ELISPOT用ニトロセルロース膜プレートに抗マウスイムノグロブリン抗体5μg/mlPBS又はPC-BSA5μg/mlPBSを100μl添加し、4°Cで一晩反応させ吸着させた。抗体溶液を除去し、completemediumにてブロッキングを行った後に、適宜希釈した鼻腔粘膜固有層由来リンパ球細胞懸濁液を加え、37°C、5CO2の条件下で4時間インキュベートした。PBSで洗浄後、100ngのペルオキシダーゼ結合抗マウスIgA抗体を加え、4°Cで一晩反応させた。PBSで洗浄後、発色基質3-amino-9-ethylcarbazole液を加えて室温、遮光条件で30分発色させた。水で洗浄し乾燥させた後に、spotを抗体産生細胞として実体顕微鏡下にて計測した。糞便中の総IgA量測定糞便を回収し、100mg/mlの濃度となるようにPBSに懸濁させ、遠心分離した後、上清の総IgA量を実施例2と同様にサンドイッチELISA法で測定した。結果は表3及び表4に示す通りであった。鼻腔粘液、糞便ともに総IgA量は投与群のほうが高く、鼻腔粘膜固有層の総IgA産生細胞数も投与群の方が多かった。ヒナゲシ抽出物の混餌投与によって、腸管及び呼吸器系でのIgA分泌が促進されていると考えられた。マウスへの反復混餌投与によるIgA分泌促進作用の評価-3普通飼料MFオリエンタル酵母にヒナゲシ花熱水抽出物を5w/w混合した試験飼料を調製した。7週齢のマウスBALB/c系20匹を対照群と試験群各群10匹に分け、実施例4と同様の方法で鼻腔粘液の総IgA抗体量及びPC特異的IgA抗体価、糞便の総IgA抗体量を測定した。結果は表5に示す通りであった。鼻腔粘液の総IgA量は投与群のほうが高値であり、ヒナゲシ抽出物の混餌投与によって、呼吸器系でのIgA分泌が促進されていると考えられた。マウスへの反復舌下投与によるIgA分泌促進作用の評価-17週齢のマウスBALB/c系を1群4匹として対照群と投与群に分け、普通飼料MFオリエンタル酵母で飼育した。投与群には飼育開始時からヒナゲシ花熱水抽出物を4mg/dayの用量で水溶液として毎日舌下投与し、対照群は同量の水のみを舌下投与した。4週目に50μgのPC-KLHを経鼻投与して免疫し、その後も1週間毎に経鼻免疫して、3回目の経鼻免疫から1週間後に鼻腔粘液及び鼻腔粘膜固有層リンパ球細胞を回収し、総IgA抗体量及び総IgA抗体産生細胞数を測定した。総IgA抗体量の測定は実施例2と同様にサンドイッチELISA法で、IgA抗体産生細胞数の測定は実施例4と同様にenzyme-linkedimmunospotELISPOT法で行った。尚、各動物から採取できる鼻腔粘膜固有層リンパ球細胞の数は非常に少ないので、4匹分の細胞をまとめて、2連でIgA抗体産生細胞数の測定を行った。結果は表6及び表7に示す通りであり、鼻腔粘液の総IgA量、総IgA産生細胞数は投与群のほうが高値であり、ヒナゲシ抽出物の舌下投与によって、呼吸器系でのIgA分泌が促進され、IgA産生細胞が増加すると考えられた。マウスへの反復舌下投与によるIgA分泌促進作用の評価-27週齢のマウスBALB/c系を1群15匹として対照群と投与群に分け、普通飼料MFオリエンタル酵母で飼育した。投与群には飼育開始時からヒナゲシ花熱水抽出物を4mg/dayの用量で水溶液として毎日舌下投与し、対照群は同量の水のみを舌下投与した。4週目に50μgのPC-KLHを経鼻投与して免疫し、その後も1週間毎に経鼻免疫して、3回目の経鼻免疫から1週間後に鼻腔粘液及び鼻腔粘膜固有層リンパ球細胞を回収し、総IgA抗体量及び総IgA抗体産生細胞数、PC特異的IgA抗体価及びPC特異的IgA抗体産生細胞数を測定した。また、糞便を回収してリン酸緩衝液に懸濁させ、遠心分離した後、上清中の総IgA抗体量を測定した。総IgA抗体量及びPC特異的IgA抗体価の測定は実施例2と同様にサンドイッチELISA法で、IgA抗体産生細胞数の測定は実施例4と同様にenzyme-linkedimmunospotELISPOT法で行った。尚、各動物から採取できる鼻腔粘膜固有層リンパ球細胞の数は非常に少ないので、3匹分の細胞をまとめて、2連でIgA抗体産生細胞数の測定を行った。結果は表8及び表9に示す通りであり、いずれの項目も投与群のほうが対照群に比べて高く、ヒナゲシ花抽出物の舌下投与によって腸管及び呼吸器系のいずれにおいてもIgA産生細胞数とIgA分泌量が増加すると考えられた。マウスへの反復経鼻投与によるIgA分泌促進作用の評価-17週齢のマウスBALB/c系を1群6匹として対照群と投与群に分け、普通飼料MFオリエンタル酵母で飼育した。投与群には飼育開始時からヒナゲシ花熱水抽出物を2mg/dayの用量で水溶液として毎日経鼻投与し、対照群は同量の水のみを経鼻投与した。4週目に50μgのPC-KLHを経鼻投与して免疫し、その後も1週間毎に経鼻免疫して、3回目の経鼻免疫から1週間後に鼻腔粘液及び鼻腔粘膜固有層リンパ球細胞を回収し、総IgA抗体量及び総IgA抗体産生細胞数を測定した。総IgA抗体量の測定は実施例2と同様にサンドイッチELISA法で、IgA抗体産生細胞数の測定は実施例4と同様にenzyme-linkedimmunospotELISPOT法で行った。尚、各動物から採取できる鼻腔粘膜固有層リンパ球細胞の数は非常に少ないので、3匹分の細胞をまとめて、2連でIgA抗体産生細胞数の測定を行った。結果は表10及び表11に示す通りであり、鼻腔粘液の総IgA量、総IgA産生細胞数は投与群のほうが高値であり、ヒナゲシ抽出物の経鼻投与によって、呼吸器系でのIgA分泌が促進され、IgA産生細胞が増加すると考えられた。マウスへの反復経鼻投与によるIgA分泌促進作用の評価-25~6ヶ月齢のマウスBALB/c系を1群5匹として対照群と投与群に分け、普通飼料MFオリエンタル酵母で飼育した。投与群には飼育開始時からヒナゲシ花熱水抽出物を2mg/dayの用量で水溶液として毎日経鼻投与し、対照群は同量の水のみを経鼻投与した。4週目に50μgのPC-KLHを経鼻投与して免疫し、その後も1週間毎に経鼻免疫して、3回目の経鼻免疫から1週間後に鼻腔粘液及び鼻腔粘膜固有層リンパ球細胞を回収し、総IgA抗体量及び総IgA抗体産生細胞数を測定した。総IgA抗体量の測定は実施例2と同様にサンドイッチELISA法で、IgA抗体産生細胞数の測定は実施例4と同様にenzyme-linkedimmunospotELISPOT法で行った。尚、各動物から採取できる鼻腔粘膜固有層リンパ球細胞の数は非常に少ないので、2~3匹分の細胞をまとめて、2連でIgA抗体産生細胞数の測定を行った。結果は表12及び表13に示す通りであり、鼻腔粘液の総IgA量、総IgA産生細胞数は投与群のほうが高値であり、ヒナゲシ抽出物の経鼻投与によって、呼吸器系でのIgA分泌が促進され、IgA産生細胞が増加すると考えられた。さらに、実施例1で調製したヒナゲシ抽出物を用いて、錠剤、散剤、吸入剤、点鼻薬、チューインガム、キャンディ、チョコレート、ビスケット、グミゼリー、錠菓、アイスクリーム、シャーベット、飲料を常法にて調製した。以下にその処方を示した。なお、これらによって本発明品の範囲を制限するものではない。下記処方にしたがって錠剤を調製した。D-マンニトール35.0乳糖27.5結晶セルロース12.5ヒドロキシプロピルセルロース5.0実施例1のヒナゲシ抽出物20.0100.0下記処方にしたがって錠剤を調製した。乳糖54.5トウモロコシデンプン38.5ステアリン酸マグネシウム2.0実施例1のヒナゲシ抽出物5.0100.0下記処方にしたがってカプセル剤を調製した。乳糖8.0ステアリン酸マグネシウム2.0実施例1のヒナゲシ抽出物90.0100.0下記処方にしたがって散剤を調製した。乳糖40.0馬鈴薯でんぷん15.0実施例1のヒナゲシ抽出物45.0100.0下記処方にしたがって吸入剤を調製した。エタノール5.0実施例1のヒナゲシ抽出物0.5L-メントール1.0水93.5100.0下記処方にしたがって点鼻薬を調製した。サリチル酸メチル0.03gマレイン酸クロルフェニラミン0.3dl―塩酸メチルエフェドリン0.3ポリソルベート800.2塩化ベンザルコニウム0.01塩化ナトリウム0.61N水酸化ナトリウム適量実施例1のヒナゲシ抽出物0.01水適量100.0mlpH6.8下記処方にしたがってチューインガムを調製した。ガムベース20.0砂糖52.0グルコース14.0水飴13.0香料0.5実施例1のヒナゲシ抽出物0.5100.0下記処方にしたがってチューインガムを調製した。ガムベース20.0砂糖53.0グルコース15.0水飴10.5香料0.5実施例1のヒナゲシ抽出物1.0100.0下記処方にしたがってチューインガムを調製した。ガムベース20.0砂糖54.0グルコース14.0水飴9.3香料0.7実施例1のヒナゲシ抽出物2.0100.0下記処方にしたがってキャンディを調製した。砂糖45.0水飴40.0香料0.5L-メントール0.3実施例1のヒナゲシ抽出物0.2水14.0100.0下記処方にしたがってキャンディを調製した。砂糖50.0水飴33.0クエン酸1.0香料0.6実施例1のヒナゲシ抽出物1.0水14.4100.0下記処方にしたがってチョコレートを調製した。カカオビター20.0全脂粉乳20.0カカオバター17.0粉糖41.7レシチン0.5香料0.2実施例1のヒナゲシ抽出物0.6100.0下記処方にしたがってビスケットを調製した。砂糖31.0小麦粉26.5片栗粉26.5バター4.0卵10.5重曹0.3実施例1のヒナゲシ抽出物1.2100.0下記処方にしたがってグミゼリーを調製した。ポリデキストロース水溶液38.0ソルビトール水溶液8.0パラチノース水溶液9.0マルトース水溶液20.0トレハロース水溶液11.0ゼラチン10.0酒石酸1.0実施例1のヒナゲシ抽出物3.0100.0下記処方にしたがって錠菓を調製した。砂糖76.0グルコース20.0ショ糖脂肪酸エステル0.2香料0.1実施例1のヒナゲシ抽出物0.5水3.2100.0下記処方にしたがって錠菓を調製した。砂糖72.0乳糖19.8ショ糖脂肪酸エステル0.2実施例1のヒナゲシ抽出物5.0水3.0100.0下記処方にしたがってタブレットを調製した。砂糖28.8ショ糖脂肪酸エステル0.2実施例1のヒナゲシ抽出物70.0水1.0100.0下記処方にしたがってアイスクリームを調製した。卵黄11.0砂糖13.5牛乳37.0生クリーム37.0バニラビーンズ0.5実施例1のヒナゲシ抽出物1.0100.0下記処方にしたがってシャーベットを調製した。オレンジ果汁20.0砂糖29.5実施例1のヒナゲシ抽出物0.5水50.0100.0下記処方にしたがって飲料を調製した。オレンジ果汁40.0異性化糖15.3クエン酸0.1ビタミンC0.05香料0.1実施例1のヒナゲシ抽出物0.05水44.4100.0下記処方にしたがって飲料を調製した。グレープ果汁70.0異性化糖12.0クエン酸0.1ビタミンC0.05香料0.1実施例1のヒナゲシ抽出物0.1水適量100.0