チオール基を持つ化合物を植物の葉面に塗布或いは散布することにより植物体の茎、葉、子実部分への亜鉛の蓄積を増加促進させる方法。請求項1に記載のチオール基を持つ化合物としてグルタチオンを使用する請求項1記載の方法。請求項1に記載の植物体としてアブラナ、キャベツ、ハクサイ等をはじめとするアブラナ科植物を用いて、請求項2に記載のグルタチオンを用いた方法。以上述べたように、土壌中に新たな資材を投入することによって植物の生育に影響が及ぶことや、これまでの研究知見を応用して遺伝子組み換え技術を用いるとしても、その技術が今日の社会に容易に受け入れられないことなど、従来の技術は様々な問題点を抱えている。また従来法では、植物に葉面散布材を与えることによって、根における特定の物質の吸収を促進する試みはほとんど行われていない。本発明の目的はかかる従来の技術が有している問題点を解決しようというものであって、植物、とりわけ農作物の葉、茎部及び子実部可食部への亜鉛の蓄積を容易に増加促進させる方法を提供することである。チオール基スルフヒドリル基は化学式が-SHで表記される水素化された硫黄を持つ置換基である。反応性に富む置換基であり、酸化されてより化学的に安定なジスルフィド-S-S-になりやすい性質を持つ。チオール基を持つ低分子化合物としては、グルタチオン、システイン、補酵素Aなどがある。その中でもグルタチオンはこれまでの研究から、植物の細胞内における重金属元素の動態に影響を及ぼしていることが確認されている非特許文献3。従って、本発明では植物の葉に限定して、グルタチオンを与え、根圏の状況及び根の生理的な状態を変化させることにより、植物が根から吸収する亜鉛の量及び植物によって吸収された亜鉛の植物体の地上部への移行量を増加させる。具体的には、溶液のpHを植物のアポスラストのpHと同等に保つための、pH緩衝能を持つMESNaOH、溶液中の成分を葉に浸透させるための界面活性剤であるTritonX-100及びグルタチオン還元型の組成から成るグルタチオン溶液を、葉表面に適量を適当回数、筆などの手段を用いて塗布、あるいは散布することによって葉に限定したグルタチオンの施用を実現する。なお、上記組成成分、適量、適当回数、手段は任意に選ぶことができるのは勿論である。上記の課題解決手段による作用効果は次の通りである。すなわち、グルタチオンなどの分子内にチオール基を持つ物質を、葉面から塗布あるいは散布することにより、容易に、植物の茎葉部及び子実部に蓄積する亜鉛の量を増加させることが可能となり、高濃度に亜鉛を含む高付加価値の農作物を市場に提供することが可能となる。植物の葉に限定して、チオール基を持つ物質であるグルタチオンを投与することにより、その植物の茎葉部分に蓄積する亜鉛の量を増加させる。以下に詳細を説明する。対象植物としてアブラナ品種:農林16号を使用する。アブラナ科植物は、重金属耐性蓄積性が比較的強く、一般的に植物体内における重金属動態を解明するための実験の材料としてよく使用される。また、今回の実験では、植物の根における栄養元素の吸収における理想的な系として水耕栽培による栽培実験を行った。水耕栽培には改変ホグランド液を用いた。表1にその組成を示す。一般的にホグランド液は畑作物の水耕栽培実験に使用される。水耕栽培に用いた装置及び生育条件は次のとおりである。すなわち、栽培には生育環境が完全に制御できる人工気象器を用いた。装置内は16時間の昼間時を模擬して明条件時には、室温24°C、光条件約270μmolm2s15方向から蛍光灯により照射に、8時間の夜間時を模擬して暗条件時には、室温16°C、光条件0μmolm2s1に環境設定した。アブラナは畑で栽培される農作物であることから、根に充分量の空気を供給するため、水耕栽培期間中はエアーポンプを用いて、水耕液中に空気を常時供給した。また、今回の水耕栽培では15Lの容器を用いて、各容器に4株の植物を栽培した。栽培時に水耕液の交換は週2度行った。処理実験には播種後、約2週間上記の方法で水耕栽培した植物を用い、2週間の処理を行った。今回行った処理実験では、植物体内における元素の動態に類似点が多いことから、その動態を観察する目的で水耕液中に10μMの濃度でCdCl2を添加した。グルタチオン溶液を使用した処理区グルタチオン処理区というでは表2に組成を示すグルタチオン溶液を最も展開した3枚の葉の表面に1枚当たり250μLずつ、1日に朝、夕2回、筆を用いて塗布した。なお、グルタチオン溶液には亜鉛を含む化合物は添加していない。グルタチオン処理を行った植物は収穫後、植物体を地上部shoot、すなわち茎葉部分及び子実を表す、と地下部root、すなわち根を表す、に分けてそれぞれの亜鉛含量の測定をした。地下部のサンプルは根に付着した水耕液の成分を洗い流すために、水道水、01M硝酸、蒸留水の順に根を浸して洗浄した。洗浄後の地下部のサンプルおよび地上部のサンプルは乾熱器105°Cで十分な乾燥を行い、水分を完全に蒸発させた。乾燥後のそれぞれのサンプルの重量を測定後、乳棒、乳鉢を用いて、各サンプルの粉砕をした。その後、マイクロウェーブ分解装置ETHOS1600、マイルストーンゼネラル社を使用して、重金属元素量測定時に妨害物質になりうる各サンプル中に含まれる有機物を分解した。この分解の操作は粉砕した各サンプルのそれぞれ03g程度総重量が03g以下の場合は全量に硝酸5ml、過酸化水素水1mlを添加することによって行った。回収した分解液をメスフラスコを用いて10mlに定容した。回収した液の亜鉛濃度はICP発光分析装置IRISAdvantageICAP、日本ジャーレルアッシュにより測定した。サンプル液中の亜鉛濃度の測定値及び、測定に用いたサンプルの重量から各植物に含まれる亜鉛含量を算出した。各処理区におけるアブラナの地上部の亜鉛濃度を図1に示す。グルタチオンを塗布しない対照区の植物に蓄積する亜鉛含量と比較して、葉に限定してグルタチオンを与えたグルタチオン処理区GSH処理区のアブラナではその亜鉛含量が約5倍になり、有意に増加していた。尚、この実験では植物に蓄積したカドミウム含量には亜鉛含量ほどの増加は見られなかった。なお図中のコマツナの亜鉛標準量は非特許文献3によるものである。この食品成分表2010に記載のコマツナの葉100gに含まれる亜鉛含量より、コマツナ葉中の水分含量を90と推定して、コマツナ乾物重1g当たりの亜鉛含量を算出した。実施例の測定値との比較のためにこの値を示した。非特許文献4以上はアブラナを対象植物として使用したが、同じ科に属する植物は類似の栄養特性を持つことが予想されるため、キャベツ、ハクサイ等をはじめとするアブラナ科植物に本発明の技術が応用が可能なことは勿論である。また、葉における亜鉛蓄積量が増加したことから、子実に蓄積する亜鉛量対しても同様の効果が期待できる。また、ここではグルタチオンを用いたがシステインなどのチオール基を持つ化合物を用いることも可能である。また、本実験では筆による葉への塗布を行ったが、散布機による塗布でも良いことは勿論である。なお、グルタチオン溶液はそのままでもまた葉面散布剤などに添加することも勿論可能である。