"繊維又は粒子からなる水不溶性担体の表面に、硫酸基、亜硫酸基及びスルホン酸基からなる群から選ばれる酸性官能基と、アミノ基とを有する官能基が導入されてなり、前記繊維の繊維径又は前記粒子の粒子径は、0.5~20μmである、血液成分吸着用担体。前記水不溶性担体の空隙率は、85~98である、請求項1記載の血液成分吸着用担体。前記水不溶性担体の陰性荷電量は、1.5×10-5~1.5×10-3eq/gである、請求項1又は2記載の血液成分吸着用担体。前記水不溶性担体は、繊維径が4~10μmの繊維である、請求項1~3のいずれか一項記載の血液成分吸着用担体。前記酸性官能基と前記アミノ基とは、アルキル鎖で結合されている、請求項1~4のいずれか一項記載の血液成分吸着用担体。前記アルキル鎖は、炭素数3以下のアルキル鎖である、請求項5記載の血液成分吸着用担体。請求項1~6のいずれか一項記載の血液成分吸着用担体が充填された、血液成分吸着カラム。しかしながら、顆粒球、単球及びリンパ球の3種類の白血球のすべてを吸着可能な既存の担体は、極細繊維から作製した嵩密度が高い不織布からなるものであって、赤血球以外のほとんどの血液成分を濾過するものであったため、血液循環中に圧力損失が生じることによる循環の停止や血液漏洩等の安全上の問題が指摘されていた。その一方で、3種類の白血球のすべての吸着が可能であり、かつ、さらに炎症性サイトカインについても吸着可能な強力な白血球除去担体が求められていたが、上記問題点の克服の困難性から、未だ完成例の報告がないのが現状である。そこで本発明は、血液循環中の圧力損失発生を抑制しながら、顆粒球、単球及びリンパ球のいずれもの白血球の吸着除去が可能であり、かつ、炎症性サイトカインを同時に吸着除去できる、血液成分吸着担体を提供することを目的とする。上記課題を解決するために鋭意研究を重ねた結果、本発明者らは、目詰まりによる圧力損失が小さく、顆粒球、単球及びリンパ球に加えて炎症性サイトカインを高効率で吸着除去することが可能な血液成分吸着担体を見出し、本発明を完成するに至った。すなわち、本発明は、以下の1~7に記載した血液成分吸着用担体及び血液成分吸着カラムを提供する。1繊維又は粒子からなる水不溶性担体の表面に、硫酸基、亜硫酸基及びスルホン酸基からなる群から選ばれる酸性官能基と、アミノ基とを有する官能基が導入されてなり、上記繊維の繊維径又は上記粒子の粒子径は、0.5~20μmである、血液成分吸着用担体。2上記水不溶性担体の空隙率は、85~98である、上記1に記載の血液成分吸着用担体。3上記水不溶性担体の陰性荷電量は、1.5×10-5~1.5×10-3eq/gである、1又は2に記載の血液成分吸着用担体。4上記水不溶性担体は、繊維径が4~10μmの繊維である、上記1~3のいずれかに記載の血液成分吸着用担体。5上記酸性官能基と上記アミノ基とは、アルキル鎖で結合されている、上記1~4のいずれかに記載の血液成分吸着用担体。6上記アルキル鎖は、炭素数3以下のアルキル鎖である、上記5に記載の血液成分吸着用担体。7上記1~6のいずれかに記載の血液成分吸着用担体が充填された、血液成分吸着カラム。本発明の血液成分吸着用担体によれば、炎症性疾患患者の血液から顆粒球、単球及びリンパ球の3種類の白血球のすべてを高効率に吸着除去することができ、炎症性サイトカインについても同時に吸着除去することができる。また、本発明の血液成分吸着用担体を充填した血液成分吸着カラムは、白血球除去療法に使用することができ、重症化した炎症性疾患の治療において好適に利用できる。本発明の血液成分吸着用担体は、繊維又は粒子からなる水不溶性担体の表面に、硫酸基、亜硫酸基及びスルホン酸基からなる群から選ばれる酸性官能基と、アミノ基とを有する官能基が導入されてなり、上記繊維の繊維径又は上記粒子の粒子径は、0.5~20μmであることを特徴とする。血液成分吸着用担体とは、血液から血液成分を吸着除去可能な材料をいう。血液成分とは、血液を構成する成分のことをいい、例えば、赤血球、白血球若しくは血小板等の血球成分又は炎症性サイトカイン等の液性因子が挙げられるが、炎症性疾患の治療を目的とする場合には、白血球及び炎症性サイトカインが吸着除去されることが好ましい。炎症性サイトカインとは、特定の細胞に情報を伝達する、細胞から分泌されるタンパク質をいい、例えば、インターロイキン、腫瘍壊死因子-α、トランスフォーミンググロウスファクターベータ、インターフェロン-γ以下、INF-γ、血管新生増殖因子および免疫抑制酸性蛋白が挙げられる。インターロイキンとは、白血球が分泌し、免疫系の調節に機能するサイトカインのことをいい、例えば、インターロイキン-1、インターロイキン-6、インターロイキン-8以下、IL-8、インターロイキン-10、インターロイキン-17以下、IL-17が挙げられる。吸着とは、血液成分が血液成分吸着用担体に付着し、容易に剥離しない状態をいう。繊維又は粒子からなる水不溶性担体の材質としては、例えば、ポリエチレン若しくはポリプロピレン等のポリオレフィン、ポリエチレンテレフタレート若しくはポリブチレンテレフタレート等のポリエステル、テフロン登録商標等のフッ素化ポリマー、ポリp-フェニレンエーテルスルホン等のポリスルホン系重合体、ポリエーテルイミド、ポリイミド、ポリアミド、ポリエーテル、ポリフェニレンサルファイド、ポリスチレン又はアクリルポリマーあるいはこれら高分子化合物をブレンド、アロイ化したものが挙げられるが、水不溶性担体の表面への官能基導入を容易とするためにはポリスチレンが好ましく、耐熱性又は加工時の形状保持の観点からはポリプロピレン又はポリプロピレン-ポリエチレン共重合体が好ましい。硫酸基、亜硫酸基及びスルホン酸基からなる群から選ばれる酸性官能基と、アミノ基とを有する官能基とは、官能基の化学構造の一部に、少なくとも一つずつの硫酸基、亜硫酸基及びスルホン酸基からなる群から選ばれる酸性官能基及びアミノ基を含む官能基をいう。硫酸基-OSO2OH、亜硫酸基-OSOOH及びスルホン酸基-SO2OHは、相互に類似する化学構造であり、いずれも酸性の水酸基を有するものであることから、強酸性や陰性という共通の性質を示す。上記の酸性官能基は、酸性官能基と血液成分との相互作用がより容易になるよう、上記の官能基の末端に位置していることが好ましい。上記のアミノ基は、第2級のアミノ基であることが好ましく、第3級のアミノ基であることがより好ましい。上記の官能基の化学構造の内、酸性官能基とアミノ基との間に存在する化学構造、すなわち、酸性官能基とアミノ基とを結合している化学構造以下、スペーサーは、水素原子、炭素原子、酸素原子、窒素原子、硫黄原子又は珪素原子から構成されることが好ましく、アルキル鎖であることがより好ましく、炭素数3以下のアルキル鎖であることがさらに好ましい。また、スペーサーが過大になると酸性官能基の密度が低下することから、スペーサーを構成する原子数は、200以下であることが好ましい。水不溶性担体の表面に硫酸基、亜硫酸基及びスルホン酸基からなる群から選ばれる酸性官能基と、アミノ基とを有する官能基を導入する際に、水不溶性担体と、上記の官能基との結合を媒介する反応性官能基としては、例えば、ハロメチル基、ハロアセチル基、ハロアセトアミドメチル基若しくはハロゲン化アルキル基等の活性ハロゲン基、エポキサイド基、カルボキシル基、イソシアン酸基、チオイソシアン酸基又は酸無水物基が挙げられるが、適度な反応性を有する観点から、活性ハロゲン基が好ましく、ハロアセトアミドメチル基がより好ましい。酸性官能基が末端に位置しており、かつ、スペーサーがアルキル鎖である上記の官能基は、例えば、市販の試薬であってその入手が容易なアミノアルキルスルホン酸を、ハロアセトアミドメチル基と反応させることで得ることができる。中でも、スペーサーが炭素数3以下のアルキル鎖である上記の官能基は、アミノエチルスルホン酸以下、タウリン若しくは3-アミノプロピオスルホン酸以下、ホモタウリン又はN-メチルアミノエチルスルホン酸以下、N-メチルタウリン若しくは1,3-プロパンスルトン以下、プロパンスルトンをハロアセトアミドメチル基と反応させることで得ることができる。繊維又は粒子からなる水不溶性担体の繊維の繊維径及び粒子の粒子径は、白血球の貪食能を発揮させるために0.5~20μmである必要があるが、貪食能をより安定して発揮させるためには4~20μmであることが好ましく、4~10μmであることがより好ましい。下限値の好ましい値は0.5μmであり、より好ましくは4μmである。上限値の好ましい値は20μmであり、より好ましくは10μmである。いずれの好ましい下限値もいずれの好ましい上限値と組み合わせることができる。ここで白血球の貪食能とは、顆粒球及び単球がヒトなどの体内に侵入した微生物や細菌等を捕らえ、これを食べようとする性質をいう。繊維の繊維径とは、繊維の小片サンプル10個をランダムに採取して、走査型電子顕微鏡を用いて2000倍の写真をそれぞれ撮影し、各写真あたり10箇所計100箇所の繊維の直径を測定した値の平均値をいう。同様に、粒子の粒子径とは、粒子の小片サンプル10個をランダムに採取して、走査型電子顕微鏡を用いて2000倍の写真をそれぞれ撮影し、各写真あたり10箇所計100箇所の粒子の直径を測定した値の平均値をいう。上記繊維の繊維径が10μm未満である場合、血液成分吸着用担体の強度を確保する観点からより太径の繊維を混合してもよいが、このような太径の繊維の繊維径は、10~50μmが好ましい。繊維からなる水不溶性担体の形状としては、例えば、織布、不織布、綿布又は中空糸が挙げられるが、形状が不織布の場合には、その形状保持のためにポリプロピレンなどの骨格材繊維を入れることも好ましい。本発明の血液成分吸着担体は、濾過の原理によって血液成分を除去しようとするものではなく、顆粒球及び単球についてはその貪食能を利用して、リンパ球及び炎症性サイトカインについては硫酸基、亜硫酸基及びスルホン酸基からなる群から選ばれる酸性官能基と、アミノ基とを有する官能基との相互作用を利用して、それぞれを吸着除去せんとするものである。このため、本発明の血液成分吸着担体をカラム等の容器に充填して用いる場合には、従来技術に比べてその空隙率を大きくして、圧力損失を大幅に抑制することが可能である。一方で、空隙率が大きすぎる場合には吸着担体の形状維持が困難となることから、上記の水不溶性担体の空隙率は、85~98であることが好ましく、90~95であることがより好ましい。下限値の好ましい値は85であり、より好ましくは90である。上限値の好ましい値は98であり、より好ましくは95である。いずれの好ましい下限値もいずれの好ましい上限値と組み合わせることができる。空隙率とは、血液成分吸着担体における空隙の容積の割合であって、血液成分吸着担体における空隙の容積を血液成分吸着担体の見かけ体積で除して、百分率で表した数値をいうが、より具体的には、走査型電子顕微鏡を用いて血液成分吸着担体の断面の200倍の写真を撮影し、その画像解析結果を用いて以下の式1により算出した。空隙率={b-a/b}×100式1a:水不溶性担体で占められている部分の面積b:血液成分吸着担体の断面の全面積硫酸基、亜硫酸基及びスルホン酸基からなる群から選ばれる酸性官能基と、アミノ基とを有する官能基に含まれる酸性官能基は、リンパ球の吸着に大きく寄与しているものと推測される。その一方で、酸性官能基の密度が大きすぎる場合には、リンパ球と、陽性電荷を有するタンパク質との競争吸着が生じるため、リンパ球の吸着率は減少するものと推測される。酸性官能基の密度は陰性荷電量で表すことが可能であるが、本発明の血液成分吸着担体の陰性荷電量は、1.5×10-5~1.5×10-3eq/gであることが好ましく、1.0×10-4~1.0×10-3eq/gであることがより好ましい。下限値の好ましい値は1.5×10-5eq/gであり、より好ましくは1.0×10-4eq/gである。上限値の好ましい値は1.5×10-3eq/gであり、より好ましくは1.0×10-3eq/gである。いずれの好ましい下限値もいずれの好ましい上限値と組み合わせることができる。ここで1eq/gの陰性荷電量とは、1gの吸着担体が1molのプロトンを吸着可能であることを表す。硫酸基、亜硫酸基及びスルホン酸基からなる群から選ばれる酸性官能基と、アミノ基とを有する官能基に含まれる酸性官能基は、炎症性サイトカインの吸着にもある程度寄与しているものと推測される。すなわち、炎症性サイトカインは1~数10kDa程度のタンパク質であって、多種類のイオン性のアミノ酸を含むため、タンパク質分子中の陽性電荷を帯びている部位と、陰性の酸性官能基とは相互作用をするものと推測される。上記の血液成分吸着用担体が充填された本発明の血液成分吸着カラムの容器形状としては、血液の入口と出口を有する容器であればよいが、例えば、円柱状、三角柱状、四角柱状、六角柱状、八角柱状等の角柱状容器が挙げられるが、血液成分吸着用担体を積層状に充填できる容器、血液成分吸着用担体を円筒状に巻いたものを充填できる容器又は血液が円筒の外周より入り内側へと流れて容器外に出る容器が好ましい。以下、本発明の血液成分吸着カラムについて、実験例により具体的に説明する。なお、実施例中、wtは重量の意味である。PP製不織布の作製36島の海島複合繊維であって、島が更に芯鞘複合によりなるものを次の成分を用いて、紡糸速度800m/分、延伸倍率3倍の製糸条件で得た。島の芯成分:ポリプロピレン島の鞘成分:ポリスチレン90wt、ポリプロピレン10wt海成分:エチレンテレフタレート単位を主たる繰り返し単位とし、共重合成分として5-ナトリウムスルホイソフタル酸を3wt含む共重合ポリエステル複合比率重量比率:芯:鞘:海=45:40:15この繊維85wtと直径20μmのポリプロピレン繊維15wtとからなる不織布を作製した後、この不織布2枚の間にシート状のポリプロピレン製ネット厚み0.5mm、単糸径0.3mm、開口部2mm角を挟み、ニードルパンチすることによって3層構造の不織布以下、PP製不織布を得た。PStPP製不織布の作製PP製不織布を95°C、3wtの水酸化ナトリウム水溶液で処理し、海成分を溶解することによって、芯鞘繊維の直径が5μmで、嵩密度が0.02g/cm3の不織布PStPP製不織布、以下、不織布Aを作製した。クロロアセトアミドメチル化不織布の作製ニトロベンゼン46wt、硫酸46wt、パラホルムアルデヒド1wt、N-メチロール-α-クロルアセトアミド以下、NMCA7wtを10°C以下で混合、撹拌、溶解しNMCA化反応液を調製した。このNMCA化反応液を5°Cにし、1gの不織布Aに対し、約40mLの固液比でNMCA化反応液を加え、水浴中で反応液を5°Cに保ったまま2時間反応させた。その後、反応液から不織布を取り出し、NMCA反応液と同量のニトロベンゼンに浸漬し洗浄した。続いて不織布を取り出し、メタノールに浸漬し洗浄を行い、クロロアセトアミドメチル化不織布以下、不織布Bを得た。テトラエチレンペンタミン化不織布の作製テトラエチレンペンタミン以下、TEPAの濃度が20mM、トリエチルアミンの濃度が473mMとなるようにそれぞれを500mLのジメチルスルホキシド以下、DMSOに溶解した液に、10gの不織布Bを浸して40°Cで3時間反応させた。反応後の不織布をDMSO及びメタノールで洗浄し、さらに水洗することによって、TEPA化不織布以下、不織布Cを得た。不織布Cに導入された官能基の構造式を、表1に示す。スルホエタンアミノ化不織布の作製13gのタウリンを500mLのDMSOに加え、そこへ濃度が473mMとなるようにトリエチルアミンを加えて混合した液に、10gの不織布Bを浸して70°Cで6時間反応させた。反応後の不織布をDMSO及びメタノールで洗浄し、さらに水洗することによって、スルホエタンアミノ化不織布以下、不織布Dを得た。不織布Dに導入された官能基の構造式を、表1に示す。スルホプロパンアミノ化不織布の作製13gのホモタウリンを500mLのDMSOに加え、そこへ濃度が473mMとなるようにトリエチルアミンを加えて混合した液に、10gの不織布Bを浸して70°Cで6時間反応させた。反応後の不織布をDMSO及びメタノールで洗浄し、さらに水洗することによって、スルホプロパンアミノ化不織布以下、不織布Eを得た。不織布Eに導入された官能基の構造式を、表1に示す。メチルスルホエタンアミノ化不織布の作製4.2gのN-メチルタウリン及び5gのヨウ化カリウムを500mLのDMSOに加え、そこへ濃度が473mMとなるようにトリエチルアミンを加えて混合した液に、10gの不織布Bを浸して60°Cで6時間反応させた。反応後の不織布をDMSO及びメタノールで洗浄し、さらに水洗することによって、メチルスルホエタンアミノ化不織布以下、不織布Fを得た。不織布Eに導入された官能基の構造式を、表1に示す。ジメチルアミノ化不織布の作製2.5gのジメチルアミン及び5gのヨウ化カリウムを500mLのDMSOに加え、そこへ濃度が473mMとなるようにトリエチルアミンを加えて混合した液に、10gの不織布Bを浸して50°Cで8時間反応させた。反応後の不織布をDMSO及びメタノールで洗浄し、さらに水洗することによって、ジメチルアミノ化不織布以下、不織布Gを得た。不織布Fに導入された官能基の構造式を、表1に示す。ジメチルスルホプロパンアミノ化不織布の作製9.77mLのプロパンスルトンを465mLのTHFに加えて混合した液に、10gの不織布Gを浸して50°Cで6時間反応させた。反応後の不織布をTHF及びメタノールで洗浄し、さらに水洗することによって、ジメチルスルホプロパンアミノ化不織布以下、不織布Hを得た。不織布Hに導入された官能基の構造式を、表1に示す。メルカプトエタンアミノ化不織布の作製11.6gのアミノエタンチオール塩酸塩を500mLのDMSOに加え、そこへ濃度が473mMとなるようにトリエチルアミンを加えて混合した液に、10gの不織布Bを浸して70°Cで6時間反応させた。反応後の不織布をDMSO及びメタノールで洗浄し、さらに水洗することによって、メルカプトエタンアミノ化不織布以下、不織布Iを得た。不織布Iに導入された官能基の構造式を、表1に示す。ジメチルメルカプトエタンアミノ化不織布の作製4.2gのジメチルアミノエタンチオール塩酸塩及び5gのヨウ化カリウムを500mLのDMSOに加え、そこへ濃度が473mMとなるようにトリエチルアミンを加えて混合した液に、10gの不織布Bを浸して60°Cで6時間反応させた。反応後の不織布をDMSO及びメタノールで洗浄し、さらに水洗することによって、ジメチルメルカプトエタンアミノ化不織布以下、不織布Jを得た。不織布Jに導入された官能基の構造式を、表1に示す。クロロアセトアミドメチル化ポリスルホンの作製32mLの5wtポリスルホン/ニトロベンゼン溶液に、0°Cで調製した2mLの2wtNMCA/硫酸溶液を加え、1時間撹拌した。ここに氷冷した800mLのメタノールを加えることでクロロアセトアミドメチル化ポリスルホンを析出させ、回収した。回収したクロロアセトアミドメチル化ポリスルホンを20mLのジメチルホルムアミド以下、DMFに溶解した液に、再度氷冷した400mLのメタノールを加えることで、クロロアセトアミドメチル化ポリスルホンを得た。テトラエチレンペンタミン化ポリスルホン不織布の作製1gのクロロアセトアミドメチル化ポリスルホンを30mLのDMFに溶解し、そこへ濃度が20mMとなるようにテトラエチレンペンタミンを加えて17時間撹拌した後、ここに氷冷した600mLのメタノールを加えることでテトラエチレンペンタミン化ポリスルホンを析出させ、回収した。回収したテトラエチレンペンタミン化ポリスルホンを20mLのDMFに再度溶解した液に、0.1gの不織布Aを浸した後、直ぐに引き上げてさらにメタノールに浸すことによって、テトラエチレンペンタミン化ポリスルホン不織布以下、不織布Kを得た。不織布Iに導入された官能基の構造式を、表1に示す。スルホエタンアミノ化ポリスルホン不織布の作製1gのクロロアセトアミドメチル化ポリスルホンを30mLのDMFに溶解し、そこへ濃度が200mMとなるようにタウリンを加えて17時間撹拌した後、ここに氷冷した600mLのメタノールを加えることでスルホエタンアミノ化ポリスルホンを析出させ、回収した。回収したスルホエタンアミノ化ポリスルホンを20mLのDMFに再度溶解した液に、0.1gの不織布Aを浸した後、直ぐに引き上げてさらにメタノールに浸すことによって、スルホエタンアミノ化ポリスルホン不織布以下、不織布Lを得た。不織布Lに導入された官能基の構造式を、表1に示す。スルホプロパンアミノ化ポリスルホン不織布の作製1gのクロロアセトアミドメチル化ポリスルホンを30mLのDMFに溶解し、そこへ濃度が200mMとなるようにホモタウリンを加えて17時間撹拌した後、ここに氷冷した600mLのメタノールを加えることでスルホプロパンアミノ化ポリスルホンを析出させ、回収した。回収したスルホプロパンアミノ化ポリスルホンを20mLのDMFに再度溶解した液に、0.1gの不織布Aを浸した後、直ぐに引き上げてさらにメタノールに浸すことによって、スルホプロパンアミノ化ポリスルホン不織布以下、不織布Mを得た。不織布Mに導入された官能基の構造式を、表1に示す。メルカプトエタンアミノ化ポリスルホン不織布の作製1gのクロロアセトアミドメチル化ポリスルホンを30mLのDMFに溶解し、そこへ濃度が200mMとなるようにアミノエタンチオール塩酸塩を加えて17時間撹拌した後、ここに氷冷した600mLのメタノールを加えることでメルカプトエタンアミノ化ポリスルホンを析出させ、回収した。回収したメルカプトエタンアミノ化ポリスルホンを20mLのDMFに再度溶解した液に、0.1gの不織布Aを浸した後、直ぐに引き上げてさらにメタノールに浸すことによって、メルカプトエタンアミノ化ポリスルホン不織布以下、不織布Nを得た。不織布Nに導入された官能基の構造式を、表1に示す。実施例1不織布Dを直径8mmの円板状に切り抜き、ポリプロピレン製の容器に入れた。この容器に、ヒト血液ヘパリン濃度30U/mLを1mL添加し、37°Cのインキュベータ内で20分間転倒混和してから各血液成分の吸着率を算出した。結果を表1に示す。なお、各血液成分数の測定は、多項目自動血球分析装置XT-1800iシスメックス株式会社を用いて行った。各血液成分の吸着率は、以下の式2~4により算出した。結果を表2に示す。顆粒球吸着率={循環前血液中の顆粒球数-循環後血液中の顆粒球数}/循環前血液中の顆粒球数×100式2単球吸着率={循環前血液中の単球数-循環後血液液中の単球数}/循環前血液中の単球数×100式3リンパ球吸着率={循環前血液中のリンパ球数-循環後血液液中のリンパ球数}/循環前血液中のリンパ球数×100式4実施例2不織布Eを直径8mmの円板状に切り抜き、ポリプロピレン製の容器に入れた。この容器に、ヒト血液ヘパリン濃度30U/mLを1mL添加し、37°Cのインキュベータ内で20分間転倒混和してから各血液成分の吸着率を算出した。結果を表2に示す。なお、各血液成分数の測定は、多項目自動血球分析装置XT-1800iシスメックス株式会社を用いて行った。各血液成分の吸着率は、上記の式2~4により算出した。結果を表2に示す。実施例3不織布Fを直径8mmの円板状に切り抜き、ポリプロピレン製の容器に入れた。この容器に、ヒト血液ヘパリン濃度30U/mLを1mL添加し、37°Cのインキュベータ内で20分間転倒混和してから各血液成分の吸着率を算出した。結果を表2に示す。なお、各血液成分数の測定は、多項目自動血球分析装置XT-1800iシスメックス株式会社を用いて行った。各血液成分の吸着率は、上記の式2~4により算出した。結果を表2に示す。実施例4不織布Hを直径8mmの円板状に切り抜き、ポリプロピレン製の容器に入れた。この容器に、ヒト血液ヘパリン濃度30U/mLを1mL添加し、37°Cのインキュベータ内で20分間転倒混和してから各血液成分の吸着率を算出した。結果を表2に示す。なお、各血液成分数の測定は、多項目自動血球分析装置XT-1800iシスメックス株式会社を用いて行った。各血液成分の吸着率は、上記の式2~4により算出した。結果を表2に示す。実施例5不織布Lを直径8mmの円板状に切り抜き、ポリプロピレン製の容器に入れた。この容器に、ヒト血液ヘパリン濃度30U/mLを1mL添加し、37°Cのインキュベータ内で20分間転倒混和してから各血液成分の吸着率を算出した。結果を表2に示す。なお、各血液成分数の測定は、多項目自動血球分析装置XT-1800iシスメックス株式会社を用いて行った。各血液成分の吸着率は、上記の式2~4により算出した。結果を表2に示す。実施例6不織布Mを直径8mmの円板状に切り抜き、ポリプロピレン製の容器に入れた。この容器に、ヒト血液ヘパリン濃度30U/mLを1mL添加し、37°Cのインキュベータ内で20分間転倒混和してから各血液成分の吸着率を算出した。結果を表2に示す。なお、各血液成分数の測定は、多項目自動血球分析装置XT-1800iシスメックス株式会社を用いて行った。各血液成分の吸着率は、上記の式2~4により算出した。結果を表2に示す。比較例1不織布Cを直径8mmの円板状に切り抜き、ポリプロピレン製の容器に入れた。この容器に、ヒト血液ヘパリン濃度30U/mLを1mL添加し、37°Cのインキュベータ内で20分間転倒混和してから各血液成分の吸着率を算出した。結果を表2に示す。なお、各血液成分数の測定は、多項目自動血球分析装置XT-1800iシスメックス株式会社を用いて行った。各血液成分の吸着率は、上記の式2~4により算出した。結果を表2に示す。比較例2不織布Gを直径8mmの円板状に切り抜き、ポリプロピレン製の容器に入れた。この容器に、ヒト血液ヘパリン濃度30U/mLを1mL添加し、37°Cのインキュベータ内で20分間転倒混和してから各血液成分の吸着率を算出した。結果を表2に示す。なお、各血液成分数の測定は、多項目自動血球分析装置XT-1800iシスメックス株式会社を用いて行った。各血液成分の吸着率は、上記の式2~4により算出した。結果を表2に示す。比較例3不織布Iを直径8mmの円板状に切り抜き、ポリプロピレン製の容器に入れた。この容器に、ヒト血液ヘパリン濃度30U/mLを1mL添加し、37°Cのインキュベータ内で20分間転倒混和してから各血液成分の吸着率を算出した。結果を表2に示す。なお、各血液成分数の測定は、多項目自動血球分析装置XT-1800iシスメックス株式会社を用いて行った。各血液成分の吸着率は、上記の式2~4により算出した。結果を表2に示す。比較例4不織布Jを直径8mmの円板状に切り抜き、ポリプロピレン製の容器に入れた。この容器に、ヒト血液ヘパリン濃度30U/mLを1mL添加し、37°Cのインキュベータ内で20分間転倒混和してから各血液成分の吸着率を算出した。結果を表2に示す。なお、各血液成分数の測定は、多項目自動血球分析装置XT-1800iシスメックス株式会社を用いて行った。各血液成分の吸着率は、上記の式2~4により算出した。結果を表2に示す。比較例5不織布Kを直径8mmの円板状に切り抜き、ポリプロピレン製の容器に入れた。この容器に、ヒト血液ヘパリン濃度30U/mLを1mL添加し、37°Cのインキュベータ内で20分間転倒混和してから各血液成分の吸着率を算出した。結果を表2に示す。なお、各血液成分数の測定は、多項目自動血球分析装置XT-1800iシスメックス株式会社を用いて行った。各血液成分の吸着率は、上記の式2~4により算出した。結果を表2に示す。比較例6不織布Nを直径8mmの円板状に切り抜き、ポリプロピレン製の容器に入れた。この容器に、ヒト血液ヘパリン濃度30U/mLを1mL添加し、37°Cのインキュベータ内で20分間転倒混和してから各血液成分の吸着率を算出した。結果を表2に示す。なお、各血液成分数の測定は、多項目自動血球分析装置XT-1800iシスメックス株式会社を用いて行った。各血液成分の吸着率は、上記の式2~4により算出した。結果を表2に示す。表2の結果から、水不溶性担体の表面に酸性官能基を有する官能基を導入した本発明の血液成分吸着担体は、水不溶性担体の表面の官能基が酸性官能基を有しない担体と比較した場合において、顆粒球及び単球の吸着率を維持しながら、さらにリンパ球の吸着率が顕著に向上していることが明らかとなった。実施例7不織布Dを直径8mmの円板状に2枚切り抜き、ポリプロピレン製の容器に入れた。この容器に、IL-8、IL-17及びIFN-γの濃度がいずれも500pg/mLになるように調製したウシ胎児血清以下、FBSを0.8mL添加し、37°Cのインキュベータ内で1時間転倒混和してからELISA法にてIL-8、IL-17及びIFN-γの残濃度をそれぞれ測定し、以下の式5~7によりIL-8、IL-17及びIFN-γ吸着率を算出した。結果を表3に示す。IL-8吸着率={転倒混和前のIL-8濃度-転倒混和後のIL-8濃度}/転倒混和前のIL-8濃度×100式5IL-17吸着率={転倒混和前のIL-17濃度-転倒混和後のIL-17濃度}/転倒混和前のIL-17濃度×100式6IFN-γ吸着率={転倒混和前のIFN-γ濃度-転倒混和後のIFN-γ濃度}/転倒混和前のIFN-γ濃度×100式7実施例8不織布Eを直径8mmの円板状に2枚切り抜き、ポリプロピレン製の容器に入れた。この容器に、IL-8、IL-17及びIFN-γの濃度がいずれも500pg/mLになるように調製したFBSを0.8mL添加し、37°Cのインキュベータ内で1時間転倒混和してからELISA法にてIL-8、IL-17及びIFN-γの残濃度をそれぞれ測定し、上記の式5~7によりIL-8、IL-17及びIFN-γ吸着率を算出した。結果を表3に示す。実施例6不織布Fを直径8mmの円板状に2枚切り抜き、ポリプロピレン製の容器に入れた。この容器に、IL-8、IL-17及びIFN-γの濃度がいずれも500pg/mLになるように調製したFBSを0.8mL添加し、37°Cのインキュベータ内で1時間転倒混和してからELISA法にてIL-8、IL-17及びIFN-γの残濃度をそれぞれ測定し、上記の式5~7によりIL-8、IL-17及びIFN-γ吸着率を算出した。結果を表3に示す。実施例7不織布Hを直径8mmの円板状に2枚切り抜き、ポリプロピレン製の容器に入れた。この容器に、IL-8、IL-17及びIFN-γの濃度がいずれも500pg/mLになるように調製したFBSを0.8mL添加し、37°Cのインキュベータ内で1時間転倒混和してからELISA法にてIL-8、IL-17及びIFN-γの残濃度をそれぞれ測定し、上記の式5~7によりIL-8、IL-17及びIFN-γ吸着率を算出した。結果を表3に示す。実施例8不織布Lを直径8mmの円板状に2枚切り抜き、ポリプロピレン製の容器に入れた。この容器に、IL-8、IL-17及びIFN-γの濃度がいずれも500pg/mLになるように調製したFBSを0.8mL添加し、37°Cのインキュベータ内で1時間転倒混和してからELISA法にてIL-8、IL-17及びIFN-γの残濃度をそれぞれ測定し、上記の式5~7によりIL-8、IL-17及びIFN-γ吸着率を算出した。結果を表3に示す。実施例9不織布Mを直径8mmの円板状に2枚切り抜き、ポリプロピレン製の容器に入れた。この容器に、IL-8、IL-17及びIFN-γの濃度がいずれも500pg/mLになるように調製したFBSを0.8mL添加し、37°Cのインキュベータ内で1時間転倒混和してからELISA法にてIL-8、IL-17及びIFN-γの残濃度をそれぞれ測定し、上記の式5~7によりIL-8、IL-17及びIFN-γ吸着率を算出した。結果を表3に示す。比較例7不織布Cを直径8mmの円板状に2枚切り抜き、ポリプロピレン製の容器に入れた。この容器に、IL-8、IL-17及びIFN-γの濃度がいずれも500pg/mLになるように調製したFBSを0.8mL添加し、37°Cのインキュベータ内で1時間転倒混和してからELISA法にてIL-8、IL-17及びIFN-γの残濃度をそれぞれ測定し、上記の式5~7によりIL-8、IL-17及びIFN-γ吸着率を算出した。結果を表3に示す。比較例8不織布Gを直径8mmの円板状に2枚切り抜き、ポリプロピレン製の容器に入れた。この容器に、IL-8の濃度がいずれも500pg/mLになるように調製したFBSを0.8mL添加し、37°Cのインキュベータ内で1時間転倒混和してからELISA法にてIL-8の残濃度を測定し、上記の式5によりIL-8吸着率を算出した。結果を表3に示す。比較例9不織布Iを直径8mmの円板状に2枚切り抜き、ポリプロピレン製の容器に入れた。この容器に、IL-8、IL-17及びIFN-γの濃度がいずれも500pg/mLになるように調製したFBSを0.8mL添加し、37°Cのインキュベータ内で1時間転倒混和してからELISA法にてIL-8、IL-17及びIFN-γの残濃度をそれぞれ測定し、上記の式5~7によりIL-8、IL-17及びIFN-γ吸着率を算出した。結果を表3に示す。比較例10不織布Jを直径8mmの円板状に2枚切り抜き、ポリプロピレン製の容器に入れた。この容器に、IL-8、IL-17及びIFN-γの濃度がいずれも500pg/mLになるように調製したFBSを0.8mL添加し、37°Cのインキュベータ内で1時間転倒混和してからELISA法にてIL-8、IL-17及びIFN-γの残濃度をそれぞれ測定し、上記の式5~7によりIL-8、IL-17及びIFN-γ吸着率を算出した。結果を表3に示す。比較例11不織布Kを直径8mmの円板状に2枚切り抜き、ポリプロピレン製の容器に入れた。この容器に、IL-8、IL-17及びIFN-γの濃度がいずれも500pg/mLになるように調製したFBSを0.8mL添加し、37°Cのインキュベータ内で1時間転倒混和してからELISA法にてIL-8、IL-17及びIFN-γの残濃度をそれぞれ測定し、上記の式5~7によりIL-8、IL-17及びIFN-γ吸着率を算出した。結果を表3に示す。比較例12不織布Nを直径8mmの円板状に2枚切り抜き、ポリプロピレン製の容器に入れた。この容器に、IL-8、IL-17及びIFN-γの濃度がいずれも500pg/mLになるように調製したFBSを0.8mL添加し、37°Cのインキュベータ内で1時間転倒混和してからELISA法にてIL-8、IL-17及びIFN-γの残濃度をそれぞれ測定し、上記の式5~7によりIL-8、IL-17及びIFN-γ吸着率を算出した。結果を表3に示す。表3の結果から、水不溶性担体の表面に酸性官能基を有する官能基を導入した本発明の血液成分吸着担体は、水不溶性担体の表面の官能基が酸性官能基を有しない担体と比較した場合において、IL-8、IL-17及びIFN-γの吸着率が高いことが明らかとなった。"