"ミエロイド系血液細胞において、AcMYC遺伝子、並びにBBMI1遺伝子、EZH2遺伝子、MDM2遺伝子、MDM4遺伝子、及びHIF1A遺伝子からなる群から選択される少なくとも一つの遺伝子を強制的に発現させることを含む、増殖能力を有するミエロイド系血液細胞を製造する方法。前記ミエロイド系血液細胞に前記遺伝子を導入することにより、該ミエロイド系血液細胞において該遺伝子を強制的に発現させる、請求項1に記載の方法。前記ミエロイド系血液細胞が、多能性幹細胞に由来する、請求項1又は2に記載の方法。前記多能性幹細胞が、人工多能性幹細胞である、請求項3に記載の方法。前記人工多能性幹細胞が、ヒト人工多能性幹細胞である、請求項4に記載の方法。前記ミエロイド系血液細胞が、末梢血単球である、請求項1又は2に記載の方法。前記末梢血単球が、ヒト末梢血単球である、請求項6に記載の方法。前記cMYC遺伝子、BMI1遺伝子、EZH2遺伝子、MDM2遺伝子、MDM4遺伝子、及びHIF1A遺伝子が、それぞれ、ヒトcMYC遺伝子、ヒトBMI1遺伝子、ヒトEZH2遺伝子、ヒトMDM2遺伝子、ヒトMDM4遺伝子、及びヒトHIF1A遺伝子である、請求項1~7のいずれか1項に記載の方法。マクロファージコロニー刺激因子MCSFの存在下で、請求項1~8のいずれか1項に記載の方法で製造したミエロイド系血液細胞を培養することを含む、ミエロイド系血液細胞を増殖させる方法。請求項1~9のいずれか1項に記載の方法により製造される細胞。請求項10に記載の細胞を樹状細胞様細胞に分化誘導することを含む、樹状細胞様細胞を製造する方法。顆粒球マクロファージコロニー刺激因子GMCSFおよびインターロイキン4IL4を含む培養液を用いて、前記ミエロイド系血液細胞を培養することにより、該ミエロイド系血液細胞を樹状細胞様細胞に分化誘導する、請求項11に記載の方法。請求項11又は12に記載の方法により製造される細胞。請求項10又は13に記載の細胞を含む、細胞医薬。前記細胞医薬は、感染症、腫瘍、アルツハイマー病、プリオン病、アミロイドーシス、白血病、臓器移植に伴う拒絶反応、及び/又は自己免疫疾患の治療又は予防に用いるための細胞医薬である、請求項14に記載の細胞医薬。請求項10若しくは13に記載の細胞、又は請求項14に記載の細胞医薬を製造するための、AcMYC遺伝子、並びにBBMI1遺伝子、EZH2遺伝子、MDM2遺伝子、MDM4遺伝子、及びHIF1A遺伝子からなる群から選択される少なくとも一つの遺伝子の使用。請求項14に記載の細胞医薬を用いて、感染症、腫瘍、アルツハイマー病、プリオン病、アミロイドーシス、白血病、及び/又は自己免疫疾患を治療する方法。本発明の課題は、増殖能力を有するミエロイド系血液細胞の製造方法、該ミエロイド系血液細胞を増殖させる方法、該方法により得られるミエロイド系血液細胞、及び該ミエロイド系血液細胞を含む細胞医薬を提供することにある。より具体的には、本発明の課題は、細胞治療としての用途に有用なヒトのミエロイド系血液細胞を大量に製造する方法を提供することにある。また、ヒトの体内に存在するミエロイド系血液細胞と同等の機能を保持し、各種医薬品などのミエロイド系血液細胞に与える影響を調べるための検査において評価細胞として有用なミエロイド系血液細胞を安定的に製造する方法を提供することにある。本発明者は、上記課題を解決するため、多能性幹細胞から大量のミエロイド系血液細胞をできるだけ少ない費用で製造するべく、様々な方法を試みた。また、多能性幹細胞に由来するミエロイド系血液細胞に様々な遺伝子を強制的に発現させることにより、長期増殖能力を付与することを試みた。その結果、多能性幹細胞由来のミエロイド系血液細胞にcMYC遺伝子に加えてBMI1、EZH2、MDM2、MDM4、あるいはHIF1Aの遺伝子を導入し強制的に発現させ、MCSFを添加した培養液を用いて継続的に培養することにより、長期間に渡ってミエロイド系血液細胞としての性質を保持しながら増殖させることが可能であることを見いだした。さらに、ヒトの体内に存在するミエロイド系血液細胞である末梢血中単球の場合も、これらの遺伝子を導入し強制的に発現させることにより、増殖させることが可能であることを見いだした。本発明は、かかる知見に基づいて完成されたものである。すなわち、本発明の態様は以下に関する。1ミエロイド系血液細胞において、AcMYC遺伝子、並びにBBMI1遺伝子、EZH2遺伝子、MDM2遺伝子、MDM4遺伝子、及びHIF1A遺伝子からなる群から選択される少なくとも一つの遺伝子を強制的に発現させることを含む、増殖能力を有するミエロイド系血液細胞を製造する方法。2前記ミエロイド系血液細胞に前記遺伝子を導入することにより、該ミエロイド系血液細胞において該遺伝子を強制的に発現させる、1に記載の方法。3前記ミエロイド系血液細胞が、多能性幹細胞に由来する、1又は2に記載の方法。4前記多能性幹細胞が、人工多能性幹細胞である、3に記載の方法。5前記人工多能性幹細胞が、ヒト人工多能性幹細胞である、4に記載の方法。6前記ミエロイド系血液細胞が、末梢血単球である、1又は2に記載の方法。7前記末梢血単球が、ヒト末梢血単球である、6に記載の方法。8前記cMYC遺伝子、BMI1遺伝子、EZH2遺伝子、MDM2遺伝子、MDM4遺伝子、及びHIF1A遺伝子が、それぞれ、ヒトcMYC遺伝子、ヒトBMI1遺伝子、ヒトEZH2遺伝子、ヒトMDM2遺伝子、ヒトMDM4遺伝子、及びヒトHIF1A遺伝子である、1~7のいずれかに記載の方法。9マクロファージコロニー刺激因子MCSFの存在下で、1~8のいずれかに記載の方法で製造したミエロイド系血液細胞を培養することを含む、ミエロイド系血液細胞を増殖させる方法。101~9のいずれかに記載の方法により製造される細胞。1110に記載の細胞を樹状細胞様細胞に分化誘導することを含む、樹状細胞様細胞を製造する方法。12顆粒球マクロファージコロニー刺激因子GMCSFおよびインターロイキン4IL4を含む培養液を用いて、前記ミエロイド系血液細胞を培養することにより、該ミエロイド系血液細胞を樹状細胞様細胞に分化誘導する、11に記載の方法。1311又は12に記載の方法により製造される細胞。1410又は13に記載の細胞を含む、細胞医薬。15前記細胞医薬は、感染症、腫瘍、アルツハイマー病、プリオン病、アミロイドーシス、白血病、及び/又は自己免疫疾患の治療又は予防に用いるための細胞医薬である、14に記載の細胞医薬。1610若しくは13に記載の細胞、又は14に記載の細胞医薬を製造するための、AcMYC遺伝子、並びにBBMI1遺伝子、EZH2遺伝子、MDM2遺伝子、MDM4遺伝子、及びHIF1A遺伝子からなる群から選択される少なくとも一つの遺伝子の使用。1714に記載の細胞医薬を用いて、感染症、腫瘍、アルツハイマー病、プリオン病、アミロイドーシス、白血病、及び/又は自己免疫疾患を治療する方法。本発明によれば、細胞ドナーの身体的負荷を伴うことなく、ミエロイド系血液細胞を大量に、かつ、安定して供給することが可能になる。また、本発明により製造したミエロイド系血液細胞は、生体内に存在するマクロファージと同様に微生物などを貪食する活性を有しており、感染症や悪性腫瘍に対する細胞療法を行うための細胞医薬を提供することを可能とする。また、本発明によれば、アルツハイマー病、アミロイドーシス、あるいは、ある種の代謝性疾患など、体内に特定の物質が大量に蓄積することに起因する疾患に対する細胞医薬を提供することも可能となる。さらに、本発明によれば、悪性腫瘍、感染症などに対する細胞ワクチンとして使用可能な樹状細胞様細胞を製造することが可能である。また、本発明によれば、自己免疫疾患や臓器移植に伴う拒絶反応などを治療する目的で免疫応答を制御するための細胞医薬品としての樹状細胞様細胞あるいはマクロファージを製造することが可能になる。さらに、本発明によれば、各種医薬品のミエロイド系血液細胞へ与える影響を検査するための試験研究において評価細胞として有用なミエロイド系血液細胞を安定的に製造することが可能になる。図1に示すように、本発明は、多能性幹細胞に由来するミエロイド系血液細胞、あるいは、生体から直接採取されたミエロイド系血液細胞に対し、CD11b分子あるいはCD33分子を発現する細胞として定義されるミエロイド系血液細胞に、生体外において増殖する能力を獲得させることを特徴とする。本発明は、前記細胞に増殖する能力を獲得させるために、該ミエロイド系血液細胞において、AcMYC遺伝子、並びにBBMI1遺伝子、EZH2遺伝子、MDM2遺伝子、MDM4遺伝子、及びHIF1A遺伝子からなる群から選択される少なくとも一つの遺伝子を強制的に発現させることを含むことを特徴とする。本発明において、出発材料となるミエロイド系血液細胞は、CD11b分子あるいはCD33分子を発現する細胞として定義され、その由来は特に限定されるものではないが、例えば、多能性幹細胞に由来するミエロイド系血液細胞、あるいは生体例えば、人体から採取されたミエロイド系血液細胞例えば、末梢血単球が例として挙げられる。本発明において、多能性幹細胞とは、試験管内などの人工的に構成された条件下invitroで増殖能を持ち、生体を構成する全ての細胞に分化が可能な細胞を言う。本発明では、多能性幹細胞として、胚性幹細胞又は人工多能性幹細胞誘導多能性幹細胞iPS細胞を用いることが好ましく、人工多能性幹細胞を用いることがより好ましい。以下、本発明において用いられる胚性幹細胞及び人工多能性幹細胞について説明する。胚性幹細胞本発明で用いる胚性ES細胞は、哺乳動物由来のES細胞であればよく、その種類などは特に限定されず、例えば、マウス、サル又はヒト由来のES細胞などを使用することができる。例えば、ヒトの胚性ES細胞は、ヒトの初期胚から樹立された幹細胞であり、生体内に存在する全ての細胞へ分化できる能力分化多能性を維持したまま、長期に渡って生体外で増殖できる細胞である。人工多能性幹細胞本発明で用いるiPS細胞とは、体細胞に人為的な操作を加えることにより、胚性幹細胞に類似した分化多能性を獲得させた細胞である。ここで用いる体細胞の種類は特に限定されず、生体を構成する全ての細胞を包含する。本発明で言うiPS細胞は、所定の培養条件下例えば、ES細胞を培養する条件下において長期にわたって自己複製能を有し、また所定の分化誘導条件下において外胚葉、中胚葉及び内胚葉への多分化能を有する幹細胞のことを言う。また、本発明における人工多能性幹細胞はマウスなどの試験動物に移植した場合にテラトーマを形成する能力を有する幹細胞でもよい。体細胞からiPS細胞を製造するためには、まず、少なくとも1種類以上の初期化遺伝子を体細胞に導入する。初期化遺伝子とは、体細胞を初期化してiPS細胞とする作用を有する初期化因子をコードする遺伝子である。初期化遺伝子の組み合わせの具体例としては、以下の組み合わせをあげることができるが、これらに限定されるものではない。iOct遺伝子、Klf遺伝子、Sox遺伝子、Myc遺伝子iiOct遺伝子、Sox遺伝子、NANOG遺伝子、LIN28遺伝子iiiOct遺伝子、Klf遺伝子、Sox遺伝子、Myc遺伝子、hTERT遺伝子、SV40largeT遺伝子ivOct遺伝子、Klf遺伝子、Sox遺伝子Oct遺伝子、Klf遺伝子、Sox遺伝子及びMyc遺伝子にはそれぞれ、複数のファミリー遺伝子が含まれている。それぞれのファミリー遺伝子の具体例としては、国際公開WO2007/069666号公報の明細書の第11頁から第13頁に記載されているものを用いることができる。具体的には、以下の通りである。Oct遺伝子に属する遺伝子の具体例としては、Oct34NM002701、Oct1A、及びOct6などを挙げることができる括弧内は、ヒト遺伝子のNCBIaccession番号を示す。好ましくはOct34である。Oct34はPOUファミリーに属する転写因子であり、未分化マーカーとして知られており、また多能性維持に関与しているとの報告もある。Klf遺伝子に属する遺伝子の具体例としては、Klf1、Klf2、Klf4、及びKlf5などを挙げることができる括弧内は、ヒト遺伝子のNCBIaccession番号を示す。好ましくはKlf4である。Klf4Kruppellikefactor4は腫瘍抑制因子として報告されている。Sox遺伝子に属する遺伝子の具体例としては、例えば、Sox1、Sox2、Sox3、Sox7、Sox15、Sox17、及びSox18を挙げることができる括弧内は、ヒト遺伝子のNCBIaccession番号を示す。好ましくはSox2である。Sox2は初期発生過程で発現し、転写因子をコードする遺伝子である。Myc遺伝子に属する遺伝子の具体例としては、cMyc、NMyc、及びLMycなどを挙げることができる括弧内は、ヒト遺伝子のNCBIaccession番号を示す。好ましくは、cMycである。cMycは細胞の分化及び増殖に関与する転写制御因子であり、多能性維持に関与しているとの報告がある。上記した遺伝子は、ヒトを含む哺乳類動物において共通して存在する遺伝子であり、本発明において任意の哺乳類動物由来例えばヒト、マウス、ラット、サルなどの哺乳類動物由来の遺伝子を用いることができる。また、野生型の遺伝子に対して、数個例えば1~30個、好ましくは1~20、より好ましくは1~10個、さらに好ましくは1~5個、特に好ましくは1から3個の塩基が置換、挿入及び/又は欠失した変異遺伝子であって、野生型の遺伝子と同様の機能を有する遺伝子を使用することもできる。本発明では特に好ましくは、初期化遺伝子として、Oct34遺伝子、Klf4遺伝子、Sox2遺伝子、及びcMyc遺伝子の組み合わせを用いることができる。初期化遺伝子を体細胞に導入する方法は、導入された初期化遺伝子が発現して体細胞の初期化を達成できる限り特に限定されない。例えば、少なくとも1種類以上の初期化遺伝子を含む発現ベクターを用いて該初期化遺伝子を体細胞に導入することができる。ベクターを用いて2種類以上の初期化遺伝子を体細胞に導入する場合には、一つの発現ベクターに2種類以上の初期化遺伝子を組み込んで、該発現ベクターを体細胞に導入してもよいし、1種類の初期化遺伝子を組み込んだ発現ベクターを2種類以上用意して、それらを体細胞に導入してもよい。発現ベクターの種類は特に限定されず、ウイルスベクターでもプラスミドベクターでもよいが、誘導多能性幹細胞の作製に使用できるウイルスベクターとしては、レトロウィルスベクターレンチウィルスベクターを含む、アデノウイルスベクター、アデノ随伴ウイルスベクター、センダイウイルスベクターなどを挙げることができる。組換えウイルスベクタープラスミドをパッケージング細胞に導入することで組換えウイルスベクターを生産することができる。上記パッケージング細胞への上記ウイルスベクタープラスミドの導入法は、特に限定されず、リン酸カルシウム法、リポフェクション法又はエレクトロポレーション法などの公知の遺伝子導入法で行うことができる。ES細胞の未分化性及び多能性を維持可能な培地は当業界で公知であり、適当な培地を組み合わせて用いることにより、本発明の人工多能性幹細胞を分離及び培養することができる。即ち、本発明の人工多能性幹細胞を培養するための培地としては、ES培地、ES培地に10ngmlの濃度のFGF2を添加後にマウス胚性線維芽細胞を24時間培養した上清であるMEF馴化ES培地以下MEF馴化ES培地などをあげることができる。本発明の人工多能性幹細胞を培養するための培地には、各種の成長因子、サイトカイン、ホルモンなど例えば、FGF2、TGFb1、アクチビンA、ノギンNanoggin、BDNF、NGF、NT1、NT2、NT3等のヒトES細胞の増殖維持に関与する成分を添加してもよい。また、分離された人工多能性幹細胞の分化能及び増殖能は、ES細胞について知られている確認手段を利用することにより確認することができる。多能性幹細胞からのミエロイド系血液細胞への分化本発明において、多能性幹細胞に由来するミエロイド系血液細胞とは、多能性幹細胞を生体外で培養しつつ分化誘導することにより作製された細胞であり、細胞表面上にミエロイド系血液細胞のマーカー分子であるCD11bあるいはCD33分子を発現する細胞を言う。ヒト多能性幹細胞をミエロイド系血液細胞へ分化させる方法は、当業界では公知である。例えば、非特許文献6、7、8、9には、ヒトの多能性幹細胞から、ミエロイド系血液細胞である樹状細胞やマクロファージを作製する方法が記載されている。以下、多能性幹細胞をミエロイド系血液細胞へ分化させる方法の例について具体的に説明するが、本発明は、以下の方法による分化誘導により製造された多能性幹細胞由来のミエロイド系血液細胞に限定されるものではない。血液細胞の分化と増殖とを誘導する性質を有する細胞をフィーダー細胞として、多能性幹細胞と、該フィーダー細胞とを共培養することにより、多能性幹細胞を、中胚葉系細胞を含む細胞群に分化させることができる。血液細胞の分化と増殖とを誘導する性質を有する細胞としては、例えば、OP9細胞理研バイオリソースセンター寄託番号:RCB1124を用いることができる。血液細胞の分化と増殖とを誘導する性質を有する細胞は、適切な培地の入った培養容器において、当該フィーダー細胞に応じた培養条件下に培養し、該培養容器の底面をほぼ覆う程度まで増殖させ、マイトマイシンC溶液による処理又は放射線照射により細胞増殖を失わせた後に、再度、別途用意した細胞培養容器に移植してフィーダー細胞層を形成させて用いられ得る。このようにして作製したフィーダー細胞上に、上記多能性幹細胞を播種し、共培養を行うことができる。前記フィーダー細胞の作製、及び共培養に用いられる培地としては、付着性の哺乳動物細胞の培養に適した培地が用いられ、フィーダー細胞の種類などに応じて適宜選択される。例えば、αMEM、DMEMダルベッコ改変イーグル培地、IMDMイスコブ改変ダルベッコ培地等が挙げられる。前記フィーダー細胞の培養条件としては、フィーダー細胞として用いる細胞の種類などに応じて適宜設定され得る。例えば、OP9細胞等の場合、0.1重量ゼラチン溶液等でコーティングされた培養容器上で培養する条件等が挙げられる。上記共培養の気相条件は、用いられる多能性幹細胞の種類、培養液の組成等に応じて、適宜設定されうるが、例えば、37°C前後特に、37°C、5体積CO2等の条件が挙げられる。上記共培養により得られる細胞群は、中胚葉系細胞の性質を示すものであり、球状に近い形態を示す細胞の塊を含有する細胞群として得られうる。多能性幹細胞と、フィーダー細胞との共培養物から、特に、多能性幹細胞に由来し、中胚葉系細胞に分化した細胞を多く含む細胞集団を分離して、後の工程に用いることが好ましい。分化した中胚葉系細胞を分離する方法としては、共培養後に回収した細胞を培養容器中に静置して付着性の強い細胞を除去することにより、付着性の弱い細胞である中胚葉系細胞を回収する方法を挙げることができる。例えば、上記共培養物をトリプシン、コラゲナーゼ等の酵素で処理し、全細胞を回収し、DMEM等の適切な培地適当量で希釈した後、該細胞溶液を新たに用意した培養容器に播種する。播種から2~5時間経過した後、培養容器に付着した細胞を廃棄し、培地中の付着しなかった細胞を中胚葉系細胞を多く含む細胞集団として回収することができる。また、回収した細胞浮遊液に含まれる100μm以上の大きさの細胞塊は、ナイロン製のメッシュ等を用いて除去することが好ましい。続いて、上記の通り得られた中胚葉系細胞を含む細胞群を、顆粒球マクロファージコロニー刺激因子GM-CSF及び/又はマクロファージコロニー刺激因子M-CSFの存在下で培養することにより、該中胚葉系細胞をミエロイド系血液細胞に分化させることができる。中胚葉系細胞を含む細胞群をミエロイド系血液細胞に分化させる際に用いることができる培地、培養条件等は特に限定させるものではないが、上述のフィーダー細胞の培養及び共培養と同様の培地、培養条件等を採用することができる。培地中の顆粒球マクロファージコロニー刺激因子GM-CSFの含有量は、中胚葉系細胞のミエロイド系血液細胞への分化を促進させる観点から、50~200ng/ml、好ましくは75~150ng/mlの範囲とすることができる。また、培地中のマクロファージコロニー刺激因子M-CSFの含有量は、中胚葉系細胞のミエロイド系血液細胞への分化を促進させる観点から、10~100ng/ml、好ましくは25~75ng/mlの範囲とすることができる。中胚葉系細胞のミエロイド系血液細胞への分化に要する培養期間としては、培養条件等により限定されるものではないが、例えば、1日~20日、好ましくは2日~15日程度である。多能性幹細胞からミエロイド系血液細胞への分化を誘導する培養法としては、非特許文献6あるいは7に記載されているように、フィーダー細胞を用いない方法、あるいは、動物由来の血清を含有しない培養液を用いる方法を使用することも可能である。以下、フィーダー細胞を使用せず、かつ、動物由来の血清を含有しない培養液を使用して、多能性幹細胞をミエロイド系血液細胞へ分化させる方法の一例について、具体的に説明する。なお、フィーダー細胞を用いることなく多能性幹細胞からミエロイド系血液細胞への分化を誘導する培養法としては、非特許文献6あるいは7に記載されているように、ここで説明する方法以外にも知られている。本発明で用いるミエロイド系血液細胞は、いずれかの方法による分化誘導により製造された多能性幹細胞由来のミエロイド系血液細胞に限定されるものではない。フィーダー細胞を用いない多能性幹細胞からのミエロイド系血液細胞分化誘導法の例フィーダー細胞と非ヒト動物の血清のいずれをも用いずに分化誘導を行う場合、細胞の培養容器への付着を助けるために、フィブロネクチンなどによるコーティングを施した培養容器を用いることができる。培養容器のコーティングに用いるフィブロネクチンは、ヒト血漿から精製したもの、あるいは、遺伝子組換えタンパク質として作製されたヒトフィブロネクチン断片等を用いることが可能である。非ヒト動物の血清を含まない培養液を用いる場合は、DMEMダルベッコ改変イーグル培地あるいはαMEM等にKSRあるいはPeprogrowIII等の血清代替添加物を加えたもの、あるいは、市販の無血清培養液AIMV、OpTmizerライフテクノロジー社Stemlineシグマ社を用いることができる。ヒトのフィブロネクチンをコートした培養容器中で、ヒトの多能性幹細胞を動物由来の血清を含有しない培養液を用いて、1520日間培養する。また、非ヒト動物の血清を含まない培養液には、多能性幹細胞の分化を促進する目的で、ヒトBMP4を添加する。分化誘導培養を行うと様々な細胞系譜の分化細胞が出現するが、この中から中胚葉系細胞に分化した細胞を分離して、分離した細胞を、中胚葉系細胞を含む細胞群として後の工程に用いることが好ましい。分化した中胚葉系細胞を分離する方法としては、フィーダー細胞を用いた分化誘導法の場合と同様に、共培養後に回収した細胞を培養容器中に静置して付着細胞を除去することにより、浮遊細胞である中胚葉系細胞を多く含む細胞集団を回収する方法を挙げることができる。続いて、上記の通り得られた中胚葉系細胞を多く含む細胞群を、顆粒球マクロファージコロニー刺激因子GM-CSF及び/又はマクロファージコロニー刺激因子M-CSFの存在下で培養することにより、該中胚葉系細胞をミエロイド系血液細胞に分化させることができる。中胚葉系細胞を含む細胞群をミエロイド系血液細胞に分化させる際に用いることができる培地、培養条件等は特に限定されるものではなく、各種の無血清培養液を使用することができる。本発明においては、生体内例えば、ヒトの体内に存在するミエロイド系血液細胞を用いることも可能である。生体内に存在するミエロイド系血液細胞として、例えば、末梢血中の単球モノサイトを用いることも可能であり、ヒトの末梢血単球を用いることが好ましい。以下に、生体内に存在するミエロイド系血液細胞を得る方法の一例としてヒトの末梢血中からの単球の分離方法を説明するが、本発明において用いられるミエロイド系血液細胞を得る方法は、この方法に限定されるものではない。ヒト末梢血からの単球の分離ヒトの末梢血を採血する。抗凝固剤としては、ヘパリンあるいはクエン酸などを用いる。採血した血液を等量の生理的食塩水、リン酸緩衝生理的食塩水、あるいは、ハンクス緩衝溶液などを用いて希釈する。次に、希釈した血液を、あらかじめ遠心チューブBDFalcon352070等中に分注しておいたフィコール液GEヘルスケア社の上に重層する。そして、遠心分離装置を用いて、遠心力500gで20分間遠心した後、界面付近に存在する単核細胞分画リンパ球と単球を含むを回収する。単球は、単核細胞中からCD14分子の発現を指標として、磁気ビーズ法などにより分離することができる。例えば、CD14マイクロビーズミルテ二-社130050201等を用いることにより分離することが可能である。あるいは、単核細胞分画を、細胞培養用の表面処理がなされた細胞培養容器を用いて616時間ほど培養し、容器に付着した細胞を回収することにより、単球あるいはそれに由来するマクロファージを得ることも可能である。通常、健康な成人の末梢血10mlから、200000500000個の単球を回収することができる。ミエロイド系血液細胞への長期増殖能力の付与本発明は、多能性幹細胞由来のミエロイド系血液細胞、あるいは、生体から採取したミエロイド系血液細胞において、cMYC遺伝子、並びにBMI1、EZH2、MDM2、MDM4、及びHIF1A遺伝子からなる群から選択される少なくとも一つの遺伝子を強制的に発現させることにより、これらの細胞に長期増殖能を付与する。前記遺伝子を強制的に発現させるための方法として、ミエロイド系血液細胞のゲノム上に存在する内在性の遺伝子を強制的に発現させても良いし、あるいは外来の遺伝子を該ミエロイド系血液細胞に導入することにより、これら遺伝子の強制的な発現を行っても良い。遺伝子の効率的かつ高レベルの発現を達成し、ミエロイド系血液細胞に長期増殖能を確実に付与する観点から、遺伝子工学技術を用いて外来遺伝子を該ミエロイド系血液細胞に導入する方法が好ましい。本発明において、増殖能力を有するミエロイド系血液細胞とは、上記の通り、ミエロイド系血液細胞において上記遺伝子を強制的に発現させることにより長期増殖能が付与されたミエロイド系血液細胞を意味する。本発明の増殖能力を有するミエロイド系血液細胞は、上記遺伝子が導入されていない、対照となるミエロイド系血液細胞つまり、出発材料として用いたミエロイド系血液細胞と比較して、より長期に渡り増殖することが可能となり、例えば、上記遺伝子を強制的に発現させた時点上記遺伝子を細胞に導入した時点から2週間以上増殖することが可能である。cMYC遺伝子の具体例としては、上記人工多能性幹細胞の調製に用いられる、ヒトのcMYC遺伝子NM_002467を挙げることができる括弧内は、NCBIaccession番号を示す。。BMI1遺伝子、EZH2遺伝子、MDM2遺伝子、MDM4遺伝子、HIF1A遺伝子の具体例としては、それぞれ、ヒトのBMI1遺伝子NM_005180、ヒトのEZH2遺伝子NM_004456、ヒトのMDM2遺伝子NM_002392、ヒトのMDM4遺伝子NM_002393、ヒトのHIF1A遺伝子NM_001530を挙げることができる括弧内は、NCBIaccession番号を示す。。cMYC遺伝子、BMI1遺伝子、EZH2遺伝子、MDM2遺伝子、MDM4遺伝子、及びHIF1A遺伝子は、ヒトを含む哺乳類動物において共通して存在する遺伝子であり、本発明において任意の哺乳類動物由来例えばヒト、マウス、ラット、サルなどの哺乳類動物由来の遺伝子を用いることができる。また、野生型の遺伝子に対して、数個例えば1~30個、好ましくは1~20、より好ましくは1~10個、さらに好ましくは1~5個、特に好ましくは1から3個の塩基が置換、挿入及び/又は欠失した変異遺伝子であって、野生型の遺伝子と同様の機能を有する遺伝子を使用することもできる。また、野生型の遺伝子と同等あるいはそれ以上の機能を有する限りにおいて、該遺伝子の産物が他のタンパク質あるいはペプチドとの融合タンパク質として発現されるように人為的に修飾を加えた遺伝子でも良い。cMYC、BMI1、EZH2、MDM2、MDM4、あるいはHIF1A遺伝子を上記ミエロイド系血液細胞に導入する方法は、導入されたこれら遺伝子が発現してミエロイド系血液細胞に長期増殖能を付与できる限り、特に限定されるものではない。例えば、導入遺伝子を含む発現ベクターを用いて該遺伝子をミエロイド系血液細胞に導入することができる。また、一つの発現ベクターに複数の遺伝子を組み込んで、該発現ベクターをミエロイド系血液細胞に導入してもよいし、各遺伝子を別々に組み込んだ発現ベクターを用意して、それらをミエロイド系血液細胞に導入してもよい。発現ベクターの種類は特に限定されず、ウイルスベクターでもプラスミドベクターでもよいが、好ましくはウイルスベクターであり、特に好ましくは導入した遺伝子がミエロイド系血液細胞の染色体に組み込まれるようなウイルスベクターである。本発明で使用できるウイルスベクターとしては、レトロウイルスベクター、レンチウイルスベクター、アデノ随伴ウイルスベクターなどを挙げることができる。組み換えウイルスベクターを作製するために用いるパッケージング細胞としては、ウイルスのパッケージングに必要なタンパク質をコードする遺伝子の少なくとも1つを欠損している組換えウイルスベクタープラスミドの該欠損するタンパク質を補給できる細胞であれば任意の細胞を用いることができる。例えばヒト腎臓由来のHEK293細胞、マウス線維芽細胞NIH3T3に基づくパッケージング細胞を用いることができる。組換えウイルスベクタープラスミドをパッケージング細胞に導入することで組換えウイルスベクターを生産することができる。上記パッケージング細胞への上記ウイルスベクタープラスミドの導入法は、特に限定されず、リン酸カルシウム法、リポフェクション法又はエレクトロポレーション法などの公知の遺伝子導入法で行うことができる。さらに、プラスミドを導入したパッケージング細胞の培養上清から、遠心分離法、あるいはウイルス精製用として市販されているカラムを用いる濃縮する方法などにより遺伝子組換えウイルスを濃縮した溶液を回収することができる。多能性幹細胞に由来するミエロイド系血液細胞、あるいは、人体から直接採取したミエロイド系血液細胞に対して、培養容器の中で、前記の様に調整した遺伝子組換えウイルスを含む溶液を添加することにより、ウイルスを感染させ、目的とする遺伝子を導入する。上記の通り製造した生体外で増殖する能力を有するミエロイド系血液細胞は、M-CSFを含む細胞培養液を用いて培養することができる。培養液中のマクロファージコロニー刺激因子M-CSFの含有量は、25~100ng/mlの範囲とすることができる。あるいは、レンチウイルスベクター等を用いてM-CSF遺伝子をミエロイド系血液細胞自身に導入することによりミエロイド系血液細胞自身にM-CSFを産生させることも可能である。この場合は、MCSFを添加していない細胞培養液を用いて培養し、増殖させることが可能である。ミエロイド系血液細胞からの樹状細胞様細胞への分化本発明の生体外で増殖する能力を有するミエロイド系血液細胞から、樹状細胞様細胞を製造することが可能である。例えば、本発明の長期増殖能を有するミエロイド系血液細胞を、GM-CSF及びインターロイキン4IL-4の存在下で培養することにより、樹状細胞様細胞を製造することができる。培養液中のGM-CSFの含有量は、50~200ng/mlの範囲、IL4の含有量は、5~20ng/mlの範囲とすることができる。本発明において、樹状細胞様細胞とは、形態、細胞表面分子、T細胞刺激能力という点で単球由来樹状細胞等と類似した性質を有する細胞である。細胞医薬本発明のミエロイド系血液細胞は、生体内に存在するマクロファージ等と同様に微生物などを貪食する活性を有しており、感染症や悪性腫瘍に対する免疫細胞療法を行うための細胞医薬を提供することができる。また、本発明のミエロイド系血液細胞は、アルツハイマー病、プリオン病、アミロイドーシス、がん、白血病、或いはある種の代謝性疾患など、体内に特定の物質が大量に蓄積することに起因する疾患等の治療に用いるための細胞医薬を提供することもできる。また、本発明の長期増殖能を有するミエロイド系血液細胞に由来する樹状細胞様細胞は、悪性腫瘍や感染症の治療に用いるための細胞ワクチンとして使用することができる。さらに、本発明のミエロイド系血液細胞に由来する樹状細胞様細胞は、自己免疫疾患や臓器移植に伴う拒絶反応等を治療する目的で、免疫応答の制御に用いるための細胞医薬を提供することができる。本発明の細胞医薬の製造の際には、本発明の長期増殖能を有するミエロイド系血液細胞、及びそれに由来するミエロイド系血液細胞を安定に保持しうることを目的として、前記したもの以外の助剤、例えば、培地等を適宜用いてもよい。以下の実施例により本発明をさらに具体的に説明するが、本発明は以下の実施例により特に限定されるものではない。実施例1:レンチウイルスベクターの作製PCR法により初期化因子であるヒトのOCT34SOX2KLF4およびcMYCのcDNAを合成し、プラスミドベクターpENTRDTOPOGibcoInvitrogen社へ挿入しクローニングを行った。その後、クローニングを行ったプラスミドDNAの塩基配列をシークエンス解析により確認した。ヒトBMI1、EZH2、MDM2、MDM4、及びHIF1AのcDNAクローンは、理化学研究所BRC遺伝子材料開発室あるいは製品評価技術基盤機構より入手した。LRclonaseを用いて、前記したcDNA断片をレンチウイルスベクターCSIIEFRfAl理化学研究所三好浩之博士より分与へ挿入した。リポフェクション法Lipofectamine2000Invitrogen社を用いて、上記で作製したCSIIEFに導入した遺伝子の各々とパッケージングコンストラクトpCAGHIVgp三好博士より分与、およびエンベロープおよびRevのコンストラクトpCMVVSVGRSVRev三好博士より分与をパッケージング細胞ウイルス産生細胞である293T細胞へ導入した。293T細胞への遺伝子導入の3日後に、細胞培養液を回収し、045μmのフィルターを通した後、遠心分離法50000G、2時間によりウイルス粒子を沈澱させ回収した。回収した組換えウイルス粒子は、DMEM溶液に懸濁した後、凍結チューブに分注し、使用時まで冷凍庫80°Cにて保存した。実施例2:ヒト人工多能性幹iPS細胞の作製ヒト腹部の皮膚片を採取し、細胞培養用プレート中で培養液DMEM10牛血清を用いて培養した。培養開始1週間目以降より、皮膚片からの線維芽細胞の遊走と増殖が認められたので、トリプシンEDTA含有リン酸干渉生理食塩水トリプシンEDTAを用いて、適宜、線維芽細胞を回収し凍結保存した。凍結保存しておいたヒト線維芽細胞を解凍し、数日間、再度培養した後、培養プレート中において前述のとおり作製し凍結保存しておいたOCT34SOX2KLF4およびcMYCを発現するレンチウイルスベクターを同時に加え、遺伝子導入を行った。遺伝子導入の46日後、トリプシンEDTAを用いて感染細胞を回収し、事前に準備しておいたマイトマイシンC処理により増殖を停止させたマウス胎児由来線維芽細胞フィーダー細胞との共培養を開始した。その翌日より、培養液をヒトES細胞用の培養液に置換し、培養を継続した。レンチウイルスベクターによる初期化因子の遺伝子の導入から2030日の後、顕微鏡観察の下で、マイクロチップを用いてES細胞様の形態を示すコロニーを人工多能性幹iPS細胞クローンとして単離し、別に準備しておいたマウス胎児由来フィーダー細胞との共培養を行った。その後、細胞の増殖に応じて、培養容器を拡大しつつ培養を継続した。ヒトiPS細胞の維持培養は、ヒト胚性幹細胞用培養液DMEMF1220KSRbFGF2ME2メルカプトエタノール50μMを用いて、マイトマイシンC処理マウス胎児線維芽細胞をフィーダー細胞としてポリスチレン製培養皿にて行った。細胞の増殖に応じて、45日に一度、細胞をCTK液コラゲナーゼトリプシンKSR液、BiochemicalandBiophysicalResearchCommunications3459269322006年を用いて510分間処理して回収し、適当な大きさの培養容器へ播種し培養を継続した。実施例3:ヒト人工多能性幹細胞のミエロイド系血液細胞への分化誘導1OP9フィーダー細胞の調整マウス由来の培養細胞株OP9をマイトマイシンCにて処理001mgml、60分したものを、ゼラチンをコートしたディッシュに播種し、翌日以降に使用した。2分化誘導培養未分化なiPS細胞を、CTK液を用いて510分間処理し、牛胎児血清入りのDMEM培養液で回収した。細胞をαMEM/20FCSに懸濁し、OP9フィーダー細胞上へ播種し、分化誘導培養を開始した。以降、3日に1度、培養液αMEM/20FCSを交換しつつ培養を継続した。分化誘導開始から18日後、トリプシンEDTAエチレンジアミン四酢酸コラゲナーゼ液を用いて細胞を処理37°C60分して解離させて回収し、ピペッティング操作により細胞浮遊液を作製した。そして、直径10cmのディッシュ1枚に由来する細胞を10mlのDMEM10FCSに懸濁し、フィーダー細胞なし、ゼラチンコートなしの直径10cmのディッシュ2枚に播種した。25時間後、ディッシュに付着しなかった細胞を回収し、100ミクロンのメッシュBDFalcon社製セルストレイナーを通過させることにより、凝集細胞塊を除いた細胞浮遊液を得た。メッシュを通過した細胞を、αMEM20FCSヒトGMCSFヒトMCSFに浮遊させ、OP9フィーダー細胞を用いずに、培養を行った。その後、3~9日程度経過すると、浮遊性あるいは弱付着性の細胞が出現し、日を追って細胞数が増加するのが観察された。図2に、このiPS細胞に由来する分化細胞の顕微鏡写真を示す。前記の浮遊細胞を回収し、白血球マーカー分子であるCD45、および、ミエロイド系細胞マーカーであるCD11bとCD33の発現を検討した。まず、抗体の非特異的な結合を阻害する目的で、Fcレセプターブロック試薬MiltenyiBiotec社製を用いて10分間処理した。その後、フルオレセインイソチオシアネートFITC標識抗ヒトCD45モノクローナル抗体、フィコエリスロシンPE標識抗ヒトマウスCD11b抗体、あるいは、PE標識抗ヒトCD33抗体を用いて室温中で40分間染色した。また、陰性対照として、同一の蛍光色素で標識したアイソタイプ適合対照抗体を用いて染色した。その後、細胞を、PBS/2FCSで2回洗浄し、洗浄後の細胞について、CellQuestソフトウェアを備えたフローサイトメーター解析装置商品名:FACScan,BectonDickinson社製を用いて分析した。図3に、フローサイトメーター解析により、この細胞の細胞表面に発現する分子を調べた結果を示す。特異的染色のパターンとアイソタイプ適合対照抗体を用いた染色パターンを重ねあわせたヒストグラムを示している。この図に示す結果から、このヒトiPS細胞を分化誘導することによって得られた浮遊細胞が、汎白血球マーカー分子であるCD45を発現していることが分かる。さらに、その多くがミエロイド系血液細胞のマーカー分子であるCD11bあるいはCD33を発現していることが分かる。この、iPS細胞に由来し、ミエロイド系血液細胞のマーカー分子を発現する細胞をiPSMCiPScellderivedmyeloidcells:iPS細胞に由来するエロイド系血液細胞と命名した。実施例4:iPSMCへのcMYCおよびBMI1の導入による長期増殖能力の付与iPSMLの作製前項で作製したiPSMCを24穴培養プレート中で培養し、そこへcMYCあるいはBMI1を発現するレンチウイルス懸濁液を単独で、あるいは同時に加えることにより、感染させた。遺伝子導入の翌日より、細胞の増殖に応じて培養液を追加しつつ、培養スケールの拡大を行った。培養液としては、継続的に、αMEM20FCSヒトGMCSFヒトMCSFを用いた。cMYCを発現するレンチウイルスのみを感染させた場合には、iPSMCは倍加時間約2日の速度で増殖した。しかしながら、レンチウイルスを感染させてから約2週間後、増殖を停止した。結果的に、レンチウイルスによるcMYCの強制的発現により、iPSMCは30倍から100倍程度に増殖した後に増殖を停止した。cMYCレンチウイルスのみを感染させた後、2週間以上が経過し増殖を停止しているiPSMCに、さらにcMYCレンチウイルスを感染させてもその後の細胞増殖は観察されなかった。BMI1のレンチウイルスのみを感染させた場合には、iPSMCは、ゆっくりと増殖し、23倍程度の細胞数となった後、増殖を停止した。cMYCとBMI1を発現するレンチウイルスを同時に感染させた場合には、iPSMCはcMYCレンチウイルスのみを感染させた場合よりも速い速度で増殖した。また、cMYCレンチウイルスのみを感染させた場合とは異なり、レンチウイルスを感染させてから2週間目以降も増殖を続けた。このように長期間にわたり増殖する能力を獲得したiPSMCをiPSMLで増殖を続けた。図4に、iPSMLの顕微鏡写真を示す。図5に、iPSMLにおける、CD45、CD11b、およびCD33の発現を検討したフローサイトメーター解析の結果を示す。この結果から、iPSMLは、細胞表面上に白血球マーカー分子であるCD45、さらにミエロイド細胞のマーカー分子であるCD11bおよびCD33を発現していることが確認された。実施例5:iPSMLの増殖におけるMCSFおよびGMCSFの必要性の検討cMYCとBMI1を発現するレンチウイルスを感染させた後、2か月間培養を継続した後のiPSMLを回収し96穴培養プレートFALSCON353072に播種し5x103細胞well培養を行った。そして、培養液中にGMCSFとMCSFが含まれている50ngmlあるいは100ngml場合と含まれていない場合とで増殖の速度を比較した。96穴培養プレートでの培養開始から48時間後に、3Hメチルチミジンを添加37Kbqwellし、その18時間後にセルハーベスタWallac社を用いて細胞中の高分子量DNAをガラスフィルターに捕捉した。そして、高分子量DNAへの3Hチミジンの取込みを、シンチレーション計測Wallac社のマイクロベータシステムを使用により測定した。高分子量DNAへの3Hチミジンの取込みは、DNA合成の速度すなわち細胞増殖の速度に比例する。図6にシンチレーション計測の結果を示す。この結果から、iPSMLの増殖には、培養液中に50ngml程度のMCSFが含まれていることが必要であることがわかる。一方、GMCSFは必ずしも必要ではないが、増殖を促進する効果があることがわかる。実施例6:iPSMLによる真菌の菌体粒子ザイモサン貪食能の解析一般に、ミエロイド系血液細胞は、細菌や真菌などの微生物を貪食する強い活性を有している。そこで、iPSMLによる真菌の菌体粒子ザイモサンの貪色活性を検討した。維持培養中のiPSMLをピペッティング操作により培養フラスコから回収し、細胞培養用のコーティングがなされている24穴培養プレートFALCON353047へ播種した2x105well。3時間静置しiPSMLの多くが培養プレートの底面に付着したのを確認した後、FITC標識ザイモサンを加えた。さらに3時間が経過した後、蛍光顕微鏡による観察を行った。図7に顕微鏡写真を示す。左側の明視野画像位相差レンズにより撮影に、培養プレートに付着しているiPSMLが認められる。右側の画像は、左側の画像と同じ視野をFITCが発する蛍光を検出する条件で撮影したものである。この蛍光観察画像では、FITC標識ザイモサン粒子の局在を示すシグナルが、iPSMLに一致して集積しているのが認められる。この結果から、iPSMLが、FITC標識ザイモサン粒子を貪食していることが示された。次に、iPSMLによるザイモサン粒子貪食の時間経過を観察した。24穴培養プレートに付着しているiPSMLにFITC標識ザイモサンを加え、一定時間5102040あるいは80分が経過した後、トリプシン/EDTAを用いてiPSMLを回収した。フローサイトメーター解析装置を用いて特異的な蛍光を有する細胞、すなわち、FITC標識ザイモサンを貪食した細胞の割合を解析した。図8に、フローサイトメーターによる解析の結果を示す。この結果から、時間の経過に従って、ザイモサン粒子を貪食したiPSMLの頻度が増加することが示された。今回の実験では、ザイモサン粒子を添加してから30分の間に約半数のiPSMLがザイモサン粒子を貪食していた。実施例7:iPSMLの樹状細胞様細胞への分化誘導cMYCを発現するレンチウイルスとBMI1を発現するレンチウイルスを同時に感染させた後、40日経過した後のiPSMLをGMCSFとIL4の存在下で4日間培養し、樹状細胞様細胞への分化誘導を行った。さらにTNFαを添加して2日間培養した時の細胞の形態位相差顕微鏡写真を、図9に示す。突起を有する不規則な形態の細胞がクラスターを形成しているのがわかる。上記のように作製したMLDCをピペッティング操作により回収し、抗HLAクラスII抗体、抗ヒト80抗体、あるいは抗ヒト86抗体を用いて染色した。あるいは、アイソタイプ適合対照抗体を用いて染色した。その後、細胞を、PBS/2FCSで2回洗浄した。洗浄後の細胞について、CellQuestソフトウェアを備えたフローサイトメーター解析装置商品名:FACScan,BectonDickinson社製を用いて分析した。図10に抗体染色後のフローサイトメーター解析の結果を示す。この図では、特異的染色のパターン実線とアイソタイプ適合対照抗体を用いた染色パターン破線を重ねあわせて示している。この解析の結果からMLDCは、生理的に存在する樹状細胞と同様に、Tリンパ球の活性化に関連するCD80、CD86、およびHLAクラスIIを細胞表面上に発現していることが判明した。実施例8:MLDCのT細胞刺激能力の検討iPSMLをGMCSFとIL4の存在下で4日間培養してMLDCを作製し、さらにTNFαを添加して2日間培養した後、細胞を回収した。この細胞に45GyのX線を照射して細胞増殖を停止させた後、96穴丸底培養プレートFALCON353077に播種し1x102細胞1x104細胞well、刺激細胞とした。TNFαの添加を行っていないMLDC、あるいは、GMCSFとIL4を加えていないiPSMLも、同様に45GyのX線を照射して細胞増殖を停止させた後、培養プレートに播種し、刺激細胞とした。そして、反応細胞として、アロのドナー由来の末梢血T細胞を加え5x104細胞well、培養を行った。末梢血T細胞は、ヒトT細胞分離キットミルテ二-バイオテク社130091156を用いて分離したものを用いた。培養開始から4日後に3Hメチルチミジンを添加37Kbqwellした。その18時間後にセルハーベスタWallac社を用いて細胞中の高分子量DNAをガラスフィルターに捕捉した。ガラスフィルターに捕捉された3Hチミジンの放射活性をシンチレーション計測Wallac社のマイクロベータシステムを使用により測定することにより、高分子DNA合成の速度、すなわちT細胞の増殖速度を定量化した。図11にT細胞増殖応答解析の結果を示す。3種類の刺激細胞iPSMLあるいはTNFα処理を行った、あるいは、行っていないMLDCのいずれも、アロT細胞を刺激し増殖応答を誘導する活性を有していることが判明した。そして、3種類の刺激細胞のなかでは、TNFα処理を行ったMLDCが最も強力なT細胞刺激能力を有していることが分かる。以上の結果から、iPSMLに由来するMLDCが、強力なT細胞刺激能力を有していることが示された。実施例9:iPSMCへのcMYCとEZH2の導入によるiPSMLの作製前項で作製したiPSMCを24穴培養プレート中で培養し、そこへcMYCとEZH2を発現するレンチウイルス懸濁液を同時に加えることにより感染させ、iPSMLを作製した。図12に、この細胞の顕微鏡写真を示す。図13に、フローサイトメーターによりCD45、CD11b、CD33およびCD14の発現を検討した結果を示す。本実施例により得られたiPSMLは、cMYCのみを導入した細胞よりも速い速度で増殖した。さらに、得られたiPSMLは、cMYCのみ導入した細胞よりも長期に渡り増殖し、レンチウイルスを感染させてから2週間目以降も増殖を続けた。実施例10:iPSMCへのcMYCとMDM2の導入によるiPSMLの作製前項で作製したiPSMCを24穴培養プレート中で培養し、そこへcMYCとMDM2を発現するレンチウイルス懸濁液を同時に加えることにより感染させ、iPSMLを作製した。図14に、この細胞の顕微鏡写真を示す。図15に、フローサイトメーターによりCD45、CD11b、およびCD33の発現を検討した結果を示す。本実施例により得られたiPSMLは、cMYCのみを導入した細胞よりも速い速度で増殖した。さらに、得られたiPSMLは、cMYCのみ導入した細胞よりも長期に渡り増殖し、レンチウイルスを感染させてから2週間目以降も増殖を続けた。実施例11:iPSMCへのcMYCとMDM4の導入によるiPSMLの作製前項で作製したiPSMCを24穴培養プレート中で培養し、そこへcMYCとMDM4を発現するレンチウイルス懸濁液を同時に加えることにより感染させ、iPSMLを作製した。図16に、この細胞の顕微鏡写真を示す。図17に、フローサイトメーターによりCD45、CD11b、およびCD33の発現を検討した結果を示す。本実施例により得られたiPSMLは、cMYCのみを導入した細胞よりも速い速度で増殖した。さらに、得られたiPSMLは、cMYCのみ導入した細胞よりも長期に渡り増殖し、レンチウイルスを感染させてから2週間目以降も増殖を続けた。実施例12:iPSMCへのcMYCとHIF1aの導入によるiPSMLの作製前項で作製したiPSMCを24穴培養プレート中で培養し、そこへcMYCとHIF1aを発現するレンチウイルス懸濁液を同時に加えることにより感染させ、iPSMLを作製した。図18に、この細胞の顕微鏡写真を示す。図19に、フローサイトメーターによりCD45、CD11b、およびCD33の発現を検討した結果を示す。本実施例により得られたiPSMLは、cMYCのみを導入した細胞よりも速い速度で増殖した。さらに、得られたiPSMLは、cMYCのみ導入した細胞よりも長期に渡り増殖し、レンチウイルスを感染させてから2週間目以降も増殖を続けた。実施例13:フィーダー細胞を用いないヒト人工多能性幹細胞のミエロイド系血液細胞への分化誘導およびiPSMLの作製未分化なヒトiPS細胞を、CTK液を用いて回収し、ヒトフィブロネクチンをコートした培養容器中で培養した。培養液は、OpTmizerTMTCellExpansionSFMとStemlineIIHematopoieticStemCellExpansionMediumを1:1で混合したもの、および、PeprogrowIIIを順次用いた。さらに、培養液には、中胚葉系細胞への分化を促進することを意図して、ヒトBMP4を5ngmlの濃度で添加した。培養開始から25日後、トリプシンEDTAコラゲナーゼ液を用いて細胞を処理37°C60分して解離させて回収し、ピペッティング操作により細胞浮遊液を作製した。そして、直径10cmのディッシュ1枚に由来する細胞を10mlのDMEM10FCSに懸濁し、フィーダー細胞なし、ゼラチンコートなしの直径10cmのディッシュ2枚に播種した。25時間後、ディッシュに付着しなかった細胞を回収し、100ミクロンのメッシュBDFalcon社製セルストレイナーを通過させることにより、凝集細胞塊を除いた細胞浮遊液を得た。その後、細胞保存液セルバンカー十慈フィールドを用いて細胞を凍結保存した。上記で凍結保存しておいた細胞を解凍し、GMCSFおよびMCSFを含むαMEM20FCSを用いて培養し10日間培養した。その結果、浮遊性あるいは付着性の細胞が出現し増殖するのが観察された。図20に、この細胞の顕微鏡写真を示す。図21に、フローサイトメーターによりCD45、CD11b、およびCD33の発現を検討した結果を示す。この結果から、細胞表面上に白血球マーカー分子であるCD45、さらにミエロイド系血液細胞のマーカー分子であるCD11bおよびCD33を発現していることが確認された。そこで、このiPS細胞由来の分化細胞もiPSMCであると判断された。次に、このiPSMCを回収し、24穴培養プレート中で培養した。そこへcMYCとBMI1を発現するレンチウイルス懸濁液を同時に加えることにより感染させ、iPSMLを作製した。図22に、この細胞の顕微鏡写真を示す。図23に、フローサイトメーターによりCD45、CD11b、およびCD33の発現を検討した結果を示す。本実施例により得られたiPSMLは、cMYCのみを導入した細胞よりも速い速度で増殖した。さらに、得られたiPSMLは、cMYCのみ導入した細胞よりも長期に渡り増殖し、レンチウイルスを感染させてから2週間目以降も増殖を続けた。実施例14:ヒト末梢血単球へのcMYCおよびBMI1の導入による長期増殖能力の付与MoMLの作製少量05ml程度のヘパリンを吸引した50mlの注射シリンジを用いて、健常人ドナーより末梢血を50ml採血した。血液は、50mlの遠心チューブ2本に25mlずつ分注し、等量のリン酸緩衝生理的食塩水PBSで希釈した。次に、この希釈した血液25mlを、あらかじめ遠心チューブBDFalcon352070等中に分注しておいたフィコール液GEヘルスケア社1714400315mlの上にゆっくりと重層した。そして、遠心分離装置を用いて、遠心力500gで20分間遠心した後、界面付近に存在する単核細胞分画リンパ球と単球を含む細胞集団を回収した。回収した単核細胞分画をRPMI1640培養液により洗浄した後、磁気ビーズ分離用緩衝液2mMのEDTAおよび2のFCSを含有するPBSに浮遊させた。そして、抗ヒトCD14抗体を結合した磁気マイクロビーズミルテ二-バイオテク社製130050201を加え、6°Cで15分間静置した。その後、磁気ビーズ分離用緩衝液で洗浄した後、細胞分離用カラムミルテ二-バイオテク社製MSカラム130042201を用いて、細胞表面にCD14を発現する細胞、すなわち、単球を分離した。また、同様の方法により分離され研究用として市販されていたヒト末梢血単球Lonza社2W400Cも使用した。前項で分離したヒト末梢血単球CD14陽性細胞を24穴培養プレート中で培養し、そこへcMYCを発現するレンチウイルス懸濁液およびBMI1を発現するレンチウイルス懸濁液を同時に加えることにより、感染させた。培養液としては、αMEM20FCSヒトGMCSFヒトMCSFを用いた。レンチウイルスを感染させた後、2週間目までは、明らかな細胞増殖は認めなかった。3週間目以降、増殖が観察されたので、細胞の増殖に応じて培養液を追加しつつ、培養スケールの拡大を行った。レンチウイルスを感染させた後、約40日後の細胞の顕微鏡写真を図24に示す。また、同時期の細胞を回収し、フローサイトメーターにより、CD45、CD11b、CD33、およびCD14の発現を調べた結果を図25に示す。この結果から、cMYCおよびBMI1の導入により長期増殖能力を獲得した単球由来の細胞が、ミエロイド系血液細胞のマーカーを発現していることが確認された。そこで、この細胞をMoMLへの分化誘導cMYCとBMI1を発現するレンチウイルスを同時に感染させた後、40日経過した後のMoMLをGMCSFとIL4の存在下で4日間培養し、樹状細胞様細胞への分化誘導を行った。さらにTNFαを添加して2日間培養した。フローサイトメトリーによるMLDCの細胞表面上のマーカー分子の発現の検討を行った。まず、Fcレセプターブロック試薬MiltenyiBiotec社製を用いて10分間処理した。次に、FITC抗ヒト80抗体、抗ヒト86抗体、あるいは抗HLAクラスII抗体を用いて室温中で40分間染色した。また、FITCあるいはPEで標識されたアイソタイプ適合対照抗体を用いて染色した。染色した細胞を、FACScanを用いて解析した。図26に抗体染色後のフローサイトメーター解析の結果を示す。この図では、特異的染色のパターン実線とアイソタイプ適合対照抗体を用いた染色パターン破線を重ねあわせて示している。この解析の結果からMLDCは、生理的に存在する樹状細胞と同様に、Tリンパ球の活性化に関連するCD80、CD86、およびHLAクラスIIを細胞表面上に発現していることが判明した。実施例16:MoML由来のMLDCのT細胞刺激能力の検討MoMLをGMCSFとIL4の存在下で4日間培養してMLDCを作製し、さらにTNFαを添加して2日間培養した後、細胞を回収した。この細胞に45GyのX線を照射して細胞増殖を停止させた後、96穴丸底培養プレートFALCON353077に播種し1x102細胞1x104細胞well、刺激細胞とした。TNFαの添加を行っていないMLDC、あるいは、GMCSFとIL4を加えていないMoMLも、同様に45GyのX線を照射して細胞増殖を停止させた後、培養プレートに播種し、刺激細胞とした。そして、反応細胞として、アロのドナー由来の末梢血T細胞を加え5x104細胞well、培養を行った。培養開始から4日後に3Hメチルチミジンを添加37Kbqwellした。その18時間後にセルハーベスタWallac社を用いて細胞中の高分子量DNAをガラスフィルターに捕捉した。ガラスフィルターに捕捉された3Hチミジンの放射活性をシンチレーション計測により測定することにより、T細胞の増殖速度を定量化した。図27にT細胞増殖応答解析の結果を示す。3種類の刺激細胞iPSMLあるいはTNFα処理を行った、あるいは、行っていないMLDCのいずれも、アロT細胞を刺激し増殖応答を誘導する活性を有していることが判明した。そして、3種類の刺激細胞のなかでは、TNFα処理を行ったMLDCが最も強力なT細胞刺激能力を有していることが分かる。以上の結果から、MoML由来のMLDCが、強力なT細胞刺激能力を有していることが示された。実施例17:末梢血単球へのcMYCおよびMDM2の導入によるMoMLの作製ヒト末梢血単球CD14陽性細胞を24穴培養プレート中で培養し、そこへcMYCおよびMDM2を発現するレンチウイルス懸濁液を同時に加えることにより、感染させた。培養液としては、αMEM20FCSヒトGMCSFヒトMCSFを用いた。細胞は、レンチウイルスを感染させた後、3週間目頃よりはっきりとした増殖傾向を示した。図28に、レンチウイルスを感染させた約1月後の細胞の顕微鏡写真を示す。図29に、同時期にフローサイトメーターによりCD45、CD11b、CD33およびCD14の発現を検討した結果を示す。実施例18:末梢血単球へのcMYC、EZH2およびMDM2の導入によるMoMLの作製ヒト末梢血単球を24穴培養プレート中で培養し、そこへcMYC、EZH2およびMDM2を発現するレンチウイルス懸濁液を同時に加えることにより、感染させた。細胞は、レンチウイルスを感染させた後、3週間目頃よりはっきりとした増殖傾向を示した。図30に、レンチウイルスを感染させた約1月後の細胞の顕微鏡写真を示す。図31に、同時期にフローサイトメーターによりCD45、CD11b、CD33およびCD14の発現を検討した結果を示す。"