"皮脂汚れ成分存在下において、4-メチル-3-ヘキセン酸生成能を有する微生物及び被験物質とを接触させ、前記微生物による生乾き臭原因物質の生成を検知することにより、生乾き臭抑制作用を有する被験物質を選択する、生乾き臭抑制剤のスクリーニング方法。前記皮脂汚れ成分がアンテイソ脂肪酸である、請求項1記載のスクリーニング方法。前記生乾き臭原因物質が4-メチル-3-ヘキセン酸である、請求項1又は2記載のスクリーニング方法。前記微生物及び前記被験物質を、皮脂汚れ成分が付着している繊維製品に添加して接触させる、請求項1~3のいずれか記載のスクリーニング方法。前記繊維製品が木綿の使用済繊維製品である、請求項4記載のスクリーニング方法。皮脂汚れ成分を含む溶液又は固体において前記微生物及び前記被験物質を接触させる、請求項1~3のいずれか記載のスクリーニング方法。前記微生物が、モラクセラMoraxella属細菌、アシネトバクターAcinetobacter属細菌、シュードモナスPseudomonas属細菌、バチルスBacillus属細菌、スフィンゴモナスSphingomonas属細菌、キュープリアビダスCupriavidus属細菌、ラルストニアRalstonia属細菌、サイクロバクターPsychorobacter属細菌、セラチアSerratia属細菌、エシェリキアEscherichia属細菌、スタフィロコッカスStaphylococcus属細菌、ブルクホルデリアBurkholderia属細菌、サッカロマイセスSaccaromyces属酵母、及びロドトルラRhodotorula属酵母からなる群より選ばれる少なくとも1種以上の微生物である、請求項1~6のいずれか1項記載のスクリーニング方法。前記微生物が、モラクセラエスピーMoraxellasp.、モラクセラオスロエンシスMoraxellaosloensis、アシネトバクターレイディオレジステンスAcinetobacterradioresistens、アシネトバクタージュニイAcinetobacterjunii、アシネトバクターカルコアセティカスAcinetobactercalcoaceticus、セラチアマルセセンスSerratiamarcescens、エシェリキアコーライEscherichiacoli、スタフィロコッカスアウレウスStaphylococcusaureus、シュードモナスアルカリゲネスPseudomonasalcaligenes、バチルスセレウスBacilluscereus、バチルスサブティリスBacillussubtilis、サイクロバクターパシフィセンシスPsychrobacterpacificensis、サイクロバクターグラシンコラPsychrobacterglacincola、スフィンゴモナスヤノイクヤエSphingomonasyanoikuyae、ラルストニアエスピーRalstoniasp、サッカロマイセスセレビジエSaccaromycescerevisiae、ロドトルラムシラギノーサRhodotorulamucilaginosa、ロドトルラスルーフィエRhodotorulaslooffiae、キュープリアビダスオキサラティカスCupriavidusoxalaticus及びブルクホルデリアセパシアBurkholderiacepaciaからなる群より選ばれる少なくとも1種以上の微生物である、請求項1~7のいずれか1項記載のスクリーニング方法。皮脂汚れ成分の存在下において、4-メチル-3-ヘキセン酸生成能を有する微生物及び被験物質とを接触させ、前記微生物による生乾き臭原因物質の生成を検知することにより、該被験物質の生乾き臭抑制作用を評価する、生乾き臭抑制剤の評価方法。前記皮脂汚れ成分がアンテイソ脂肪酸である、請求項9記載の評価方法。前記生乾き臭原因物質が4-メチル-3-ヘキセン酸である、請求項9又は10記載の評価方法。前記微生物及び前記被験物質を、皮脂汚れ成分が付着している繊維製品に添加して接触させる、請求項9~11のいずれか記載の評価方法。前記繊維製品が木綿の使用済繊維製品である、請求項12記載の評価方法。皮脂汚れ成分を含む溶液又は固体において前記微生物及び前記被験物質を接触させる、請求項9~11のいずれか1項記載の評価方法。前記微生物が、モラクセラMoraxella属細菌、アシネトバクターAcinetobacter属細菌、シュードモナスPseudomonas属細菌、バチルスBacillus属細菌、スフィンゴモナスSphingomonas属細菌、キュープリアビダスCupriavidus属細菌、ラルストニアRalstonia属細菌、サイクロバクターPsychorobacter属細菌、セラチアSerratia属細菌、エシェリキアEscherichia属細菌、スタフィロコッカスStaphylococcus属細菌、ブルクホルデリアBurkholderia属細菌、サッカロマイセスSaccaromyces属酵母、及びロドトルラRhodotorula属酵母より選ばれる少なくとも1種以上の微生物である、請求項9~14のいずれか1項記載の評価方法。前記微生物が、モラクセラエスピーMoraxellasp.、モラクセラオスロエンシスMoraxellaosloensis、アシネトバクターレイディオレジステンスAcinetobacterradioresistens、アシネトバクタージュニイAcinetobacterjunii、アシネトバクターカルコアセティカスAcinetobactercalcoaceticus、セラチアマルセセンスSerratiamarcescens、エシェリキアコーライEscherichiacoli、スタフィロコッカスアウレウスStaphylococcusaureus、シュードモナスアルカリゲネスPseudomonasalcaligenes、バチルスセレウスBacilluscereus、バチルスサブティリスBacillussubtilis、サイクロバクターパシフィセンシスPsychrobacterpacificensis、サイクロバクターグラシンコラPsychrobacterglacincola、スフィンゴモナスヤノイクヤエSphingomonasyanoikuyae、ラルストニアエスピーRalstoniasp、サッカロマイセスセレビジエSaccaromycescerevisiae、ロドトルラムシラギノーサRhodotorulamucilaginosa、ロドトルラスルーフィエRhodotorulaslooffiae、キュープリアビダスオキサラティカスCupriavidusoxalaticus及びブルクホルデリアセパシアBurkholderiacepaciaからなる群より選ばれる少なくとも1種以上の微生物である、請求項9~15のいずれか1項記載の評価方法。本発明は、高精度で簡便に生乾き臭抑制剤をスクリーニングすることができる、生乾き臭抑制剤のスクリーニング方法を提供することを課題とする。また、本発明は、高精度で簡便に生乾き臭抑制作用を評価することができる、生乾き臭抑制剤の評価方法を提供することを課題とする。上記課題に鑑み、本発明者等は、生乾き臭の原因物質、原因菌、及び発生のメカニズムの観点から鋭意検討を行った。その結果、生乾き臭の原因物質としては、4-メチル-3-ヘキサン酸、4-メチル-3-ヘキセン酸、5-メチル-2-ヘキサン酸、5-メチル-2-ヘキセン酸などの中級分岐脂肪酸が知られていたが、これらの中でも特に4-メチル-3-ヘキセン酸の閾値が他の物質と比較して特段に低く、主な原因物質であることを見出した。さらに、生乾き臭のうち、繊維製品を十分に乾燥させた後湿気を帯びることによりぶり返す再発性の生乾き臭は、乾燥後、十分に生乾き臭が除去された後であっても、特定の微生物が繊維製品中に生存又はそこで増殖して、繊維製品に残存した皮脂汚れ成分から生乾き臭原因物質を産生される臭いであること、或いは乾燥によって繊維に囚われていた臭いが、繊維製品の湿潤により再び解放され、低閾値であるため感じられ易いことを見出した。そして、その生乾き臭は4-メチル-3-へキセン酸が大きく影響していることを見出し、このような生乾き臭発生には、4メチル-3-ヘキセン酸生成能を有する微生物が関与していることを見出した。テルペンより4-メチル-3-ヘキセン酸を生成する微生物については従来知られていた。しかし、微生物が皮脂汚れ成分の存在下で、生乾き臭原因物質、あるいは4-メチル-3-ヘキセン酸を産生することはこれまで全く知られておらず、本発明者等が新たに見出した知見である。本発明はこれらの知見に基づいて完成するに至ったものである。本発明は、皮脂汚れ成分の存在下において、4-メチル-3-ヘキセン酸生成能を有する微生物及び被験物質とを接触させ、生乾き臭原因物質の生成を検知することにより、生乾き臭抑制作用を有する被験物質を選択する、生乾き臭抑制剤のスクリーニング方法に関する。さらに、本発明は、皮脂汚れ成分の存在下において、4-メチル-3-ヘキセン酸生成能を有する微生物及び被験物質とを接触させ、前記微生物による生乾き臭原因物質の生成を検知することにより、該被験物質の生乾き臭抑制作用を評価する、生乾き臭抑制剤の評価方法に関する。本発明の生乾き臭抑制剤のスクリーニング方法によれば、高精度で簡便に生乾き臭抑制剤をスクリーニングすることができる。また、本発明の生乾き臭抑制剤の評価方法によれば、生乾き臭抑制剤の生乾き臭抑制作用を高精度で簡便に評価することができる。本発明の生乾き臭抑制剤のスクリーニング方法は、皮脂汚れ成分の存在下において、4-メチル-3-ヘキセン酸本明細書において、4M3Hともいう生成能を有する微生物及び被験物質とを接触させ、前記微生物による生乾き臭原因物質の生成を検知することにより、生乾き臭抑制作用を有する被験物質を選択する工程を含んでなる。本発明の生乾き臭抑制剤のスクリーニング方法によれば、高精度な生乾き臭抑制剤のスクリーニングを簡便に行うことが可能となる。また、本発明の生乾き臭抑制剤の評価方法は、皮脂汚れ成分の存在下において、4M3H生成能を有する微生物及び被験物質とを接触させ、前記微生物による生乾き臭原因物質の生成を検知することにより、該被験物質の生乾き臭抑制作用を評価する工程を含んでなる。本発明の生乾き臭抑制剤の評価方法によれば、例えば、生乾き臭抑制剤の候補として選択した物質について、その生乾き臭抑制作用の高精度な評価を簡便に行うことが可能となる。なお、本明細書において生乾き臭とは、使用済繊維製品を洗濯し乾燥が不十分な場合又は繊維製品が湿気を帯びた場合に繊維製品から生じる臭いをいう。しかし、繊維製品を十分に乾燥させることにより生乾き臭を一時的に除去できても、乾燥後すぐ若しくは保管後に再び使用し始めてすぐ若しくは繊維製品を使用し始めてしばらくしてから、又は雨、汗等の湿気などにより、繊維製品から雑巾臭様の生乾き臭が再発することがある。このように、十分に乾燥させることにより生乾き臭を一時的に除去した繊維製品が湿気を帯びることにより再発する雑巾臭様の生乾き臭を本明細書において再発性の生乾き臭又は再発性臭という場合もある。繊維製品を洗濯後乾燥が不十分なため生じる生乾き臭としては、S硫黄臭、N窒素臭、アルデヒド臭、低級脂肪酸臭、4M3H臭を含む中級分岐脂肪酸臭などの複合臭である。一方、繊維製品を十分に乾燥させて生乾き臭を除去した後、再び雨、汗等の湿気などにより、繊維製品から再発する雑巾様臭の再発性の不快臭は、4M3H臭を主とする中級分岐脂肪酸臭が大部分であり、その他のS臭、N臭、アルデヒド臭などの揮発性の高い臭いはほとんど発生しない。また、生乾き臭抑制とは、生乾き臭を抑制すること、生乾き臭生成を予防することを包含するものである。そして本発明では、生乾き臭として前記再発性の生乾き臭、特には4M3H臭の抑制を特徴的に指すものとする。なお、4-メチル-3-ヘキセン酸には、下記に示すように、シストランス異性体が存在し、本発明においては、シス型、トランス型のいずれの構造の化合物も包含するものである。本発明における生乾き臭抑制剤の作用機序については特に制限はない。生乾き臭抑制剤の作用機序としては、繊維製品に付着した微生物の殺菌、繊維製品に残存する汗、皮脂等の生乾き臭原因物質への変換を予防、生乾き臭原因物質の無臭物質への分解又は変換、生乾き臭のマスキング等が挙げられ、本発明の生乾き臭抑制剤の作用機序は、如何なる種類であってもよい。本発明における4M3H生成能を有する微生物は、4M3H生成能を有する微生物の菌体自体の他に、破砕菌体、菌体培養液、並びに4M3H生成能を有する微生物由来の粗抽出物及び精製酵素等の菌体処理物も含む。本発明に用いる4M3H生成能を有する微生物の入手方法について説明する。4M3H生成能を有する微生物の入手方法に特に制限はないが、1繊維製品の官能評価を行い、その結果生乾き臭を発した繊維製品から微生物を採取する方法、2繊維製品に存在する微生物を採取し、採取した微生物の4M3H生成能を測定し、4M3H生成能を有する微生物を選択する方法、3環境より分離した又は微生物供託機関から入手した微生物の4M3H生成能を測定し、4M3H生成能を有する微生物を選択する方法、44M3H生成能を有する微生物との特定の遺伝子配列の相同性を比較し、相同性の高い微生物を選択する方法、等が挙げられる。本発明において、前記方法のうちいずれかの方法により4M3H生成能を有する微生物を選択してもよいし、2つ以上の方法を組み合わせて4M3H生成能を有する微生物を選択してもよい。本発明に用いる4M3H生成能を有する微生物の入手方法について具体的に説明する。しかし、本発明はこれらに制限するものではない。まず、前記1の方法繊維製品の官能評価を行い、生乾き臭を発する繊維製品から微生物を採取する方法の概要について説明する。家庭等で、洗濯後に使用した、又は洗濯後保管しておいた洗濯後は未使用繊維製品、たとえば、タオル、Tシャツ、枕カバー、下着類を回収し、官能評価により生乾き臭を強く感じる繊維製品を選択する。選択した繊維製品を一定の大きさたとえば5×5cm、2×2cmに裁断し、レシチンポリソルベート本明細書においてLPともいう希釈液日本製薬社製又は生理食塩水等に添加後、攪拌により得られた抽出液をレシチンポリソルベート添加ソイビーンカゼインダイジェスト本明細書においてSCD-LPともいう寒天培地日本製薬社製やポテトデキストロースアガー本明細書においてPDAともいう培地BD社製などの寒天培地に塗抹して一定時間たとえば35°C、24時間培養後、得られたコロニーから微生物を単離する。単離した各菌株は、滅菌した使用済み繊維製品、たとえば生乾き臭発生が認められたタオルなどを一定の大きさたとえば5×5cm、2×2cmに切断したのちに滅菌処理したものに塗布して培養、又は皮脂汚れ成分の存在下において固体培養又は液体培養したのちに官能評価により生乾き臭を感知した菌株を選抜する。選抜した各菌株の同定が必要な場合は、その方法に制限はないが、細菌では16SrDNA遺伝子の上流領域約500bp、真菌ではLSULargeSubunitのD2領域の約200~500bpの塩基配列を決定し、当該塩基配列と基準株との同一性に基づき行なうことができる。なお、塩基配列の同一性は、遺伝子情報処理ソフトウェアClustalWhttpclustalwddbjnigacjptopjhtml等を用いて算出することもできる。次に、前記2の方法繊維製品に存在する微生物を採取し、採取した微生物の4M3H生成能を測定し、4M3H生成能を有する微生物を選択する方法の概要について説明する。家庭などで、洗濯後に使用した、あるいは洗濯後保管しておいた洗濯後は未使用繊維製品、たとえば、タオル、Tシャツ、枕カバー、下着類などを回収し、一定の大きさたとえば5×5cm、2×2cmに裁断し、LP希釈液日本製薬社製、又は生理食塩水などに添加後、攪拌することにより得られた抽出液をSCD-LP寒天培地日本製薬社製やPDA培地BD社製などの寒天培地に塗抹して一定時間たとえば35°C、24時間培養後、得られたコロニーから微生物を単離する。単離した各菌株は、滅菌した使用済み繊維製品、たとえば生乾き臭発生が認められたタオルなどを一定の大きさたとえば5×5cm、2×2cmに切断したのちに滅菌処理したものに塗布して培養、又は皮脂汚れ成分の存在下において固体培養又は液体培養したのちに4M3Hの生成を検知することにより、4M3H生成が認められた菌株選抜する。選抜した各菌株の同定が必要な場合は、その方法に制限はないが、たとえば、細菌では16SrDNA遺伝子の上流領域約500bp、真菌ではLSUのD2領域の約200~500bpの塩基配列を決定し、当該塩基配列と基準株との同一性に基づき行なうことができる。なお、塩基配列の同一性は、遺伝子情報処理ソフトウェアClustalW等を用いて算出することもできる。次に、前記3の方法環境より分離した、又は微生物供託機関から入手した微生物の4M3H生成能を測定し、4M3H生成能を有する微生物を選択する方法について説明する。ATCCAmericanTypeCultureCollection、NBRCNITEBiologicalResourceCenter、JCM、NCIMBNationalCollectionofIndustrial,MarineandFoodBacteriaなどの菌株分譲機関から菌株を購入する。あるいは、土壌、植物、河川水、住居内など様々な環境より常法によりSCD-LP寒天培地日本製薬社製やPDA培地BD社製などに菌株を分離後、単離する。なお、ここで用いる培地に特に制限はない。購入あるいは単離した各菌株を、滅菌した使用済み繊維製品、たとえば生乾き臭発生が認められたタオルなどを一定の大きさたとえば5×5cm、2×2cmに切断したのちに滅菌処理したものに塗布して培養した後に、又は皮脂汚れ成分の存在下において固体培養又は液体培養したのちに、4M3Hの生成を検知することにより、4M3H生成が認められた菌株選抜する。環境から分離した菌から選抜した各菌株について同定が必要な場合は、その方法に制限はないが、たとえば、細菌では16SrDNA遺伝子の上流領域約500bp、真菌ではLSUのD2領域の約200~500bpの塩基配列を決定し、当該塩基配列と基準株との同一性に基づき行なうことができる。なお、塩基配列の同一性は、遺伝子情報処理ソフトウェアClustalW等を用いて算出することもできる。次に、前記4の方法4M3H生成能の有する微生物との特定の遺伝子配列の相同性を比較し、相同性の高い微生物を選択する方法の概要について説明する。まず、上記1、2及び/又は3の方法等により選択した4M3H生成能を有する微生物の特定の遺伝子の塩基配列を決定する。そして、決定した塩基配列と同一性の高い塩基配列を有する微生物を選択することにより、本発明に用いる4M3H生成能を有する微生物を入手することができる。例えば、後述の実施例でも示すように、モラクセラエスピーMoraxellasp4-1株、モラクセラエスピーMoraxellasp4-4株及びモラクセラオスロエンシスMoraxellaosloensisATCC19976等は、生乾き臭の原因菌であるので、4M3H生成能を有する微生物を基準サンプルとして選択する。次に、たとえば、配列番号1、2及び3に示すように、基準サンプルの16SrDNAの領域等の塩基配列を決定する。そして、決定した基準サンプルの塩基配列の全部又は一部と同一性の高い塩基配列を有する微生物を選択する。ここで、同一性の高いとは、配列番号1~3のいずれかに示す塩基配列等、基準サンプルの塩基配列との同一性が好ましくは95以上、より好ましくは97以上、さらに好ましくは98以上、特に好ましくは99以上であることをいう。なお、モラクセラエスピー41株は、2010年10月14日付で、独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センター茨城県つくば市東1-1-1つくばセンター中央第6に、受託番号FERMP22030として寄託された。微生物の塩基配列は、通常の方法により決定することができる。また、塩基配列の同一性については、LipmanPearson法Science,227,1435,1985等によって計算される。具体的には、遺伝情報処理ソフトウェアGenetyxWinソフトウェア開発製のホモロジー解析Searchhomologyプログラムを用いて、パラメーターであるUnitsizetocomparektupを2として解析を行うことにより算出することができる。本発明に用いる微生物は4M3H生成能を有する微生物であれば特に制限はなく、皮脂成分存在下で4M3Hを生成する微生物であればよい。例えば、モラクセラMoraxella属細菌、アシネトバクターAcinetobacter属細菌、シェードモナスPseudomonas属細菌、バチルスBacillus属細菌、スフィンゴモナスSphingomonas属細菌、ラルストニアRalstonia属細菌、キュープリアビダスCupriavidus属細菌、サイクロバクターPsychorobacter属細菌、セラチアSerratia属細菌、エシェリキアEscherichia属細菌、スタフィロコッカスStaphylococcus属細菌、ブルクホルデリアBurkholderia属細菌、サッカロマイセスSaccaromyces属酵母、及びロドトルラRhodotorula属酵母からなる群より選ばれる少なくとも1種の微生物であることが好ましく、モラクセラエスピーMoraxellasp.、モラクセラオスロエンシスMoraxellaosloensis、アシネトバクターレイディオレジステンスAcinetobacterradioresistens、アシネトバクタージュニイAcinetobacterjunii、アシネトバクターカルコアセティカスAcinetobactercalcoaceticus、セラチアマルセセンスSerratiamarcescens、エシェリキアコーライEscherichiacoli、スタフィロコッカスアウレウスStaphylococcusaureus、シュードモナスアルカリゲネスPseudomonasalcaligenes、バチルスセレウスBacilluscereus、バチルスサブティリスBacillussubtilis、サイクロバクターパシフィセンシスPsychrobacterpacificensis、サイクロバクターグラシンコラPsychrobacterglacincola、スフィンゴモナスヤノイクヤエSphingomonasyanoikuyae、ラルストニアエスピーRalstoniasp、サッカロマイセスセレビジエSaccaromycescerevisiae、ロドトルラムシラギノーサRhodotorulamucilaginosa、ロドトルラスルーフィエRhodotorulaslooffiae、キュープリアビダスオキサラティカスCupriavidusoxalaticus及びブルクホルデリアセパシアBurkholderiacepaciaからなる群より選ばれる少なくとも1種の微生物であることがより好ましく、モラクセラエスピー、モラクセラオスロエンシス、シュードモナスアルカリゲネス、ラルストニアエスピー、サッカロマイセスセレビジエ、ロドトルラムシラギノーサ及びロドトルラスルーフィエからなる群より選ばれる少なくとも1種の微生物であることがさらに好ましく、モラクセラエスピー及びモラクセラオスロエンシスからなる群より選ばれる少なくとも1種の微生物であることが特に好ましい。本発明において、4M3H生成能を有する微生物として1種の微生物を用いてもよいし、2種以上の微生物を組み合わせて用いてもよい。なお、本発明においてモラクセラエスピーとは、その16SrDNA遺伝子の塩基配列が、配列番号1、配列番号2又は配列番号3の塩基配列と95以上、より好ましくは97以上、さらに好ましくは98以上、特に好ましくは99以上の同一性を有する塩基配列を含む微生物を意味する。本明細書において、皮脂汚れとは、衣類等の繊維製品に付着する最も代表的な汚れであり、遊離脂肪酸、グリセリド等の油分を多量に含有しており、それらがほこり中のカーボンや泥、剥離した角質等を閉じ込めたものが、繊維製品等で観察されるものである。本発明に用いる皮脂汚れ成分としては、衣類等に通常見られる皮脂汚れの成分であれば特に制限はないが、繊維製品から生じる生乾き臭原因物質の前駆体となり得る物質が好ましい。繊維製品から生じる生乾き臭原因物質の前駆体となり得る物質としては、例えば炭素数9~21好ましくは炭素数11~19、より好ましくは炭素数17~19のアンテイソ脂肪酸が挙げられる。これらの中には、皮脂汚れ中には実際には存在しない化合物も含まれるが、本明細書においてはこれらのアンテイソ脂肪酸も皮脂汚れ成分に含まれるものとする。本発明において、前記皮脂汚れ成分はアンテイソ脂肪酸であることが好ましい。本発明に好ましく用いられるアンテイソ脂肪酸は、飽和脂肪酸及び不飽和を含有する脂肪酸のいずれであってもよく、アンテイソ脂肪酸の塩及びエステルも前記アンテイソ脂肪酸に含むものとする。具体的には、6-メチルオクタン酸、8-メチルデカン酸、12-メチルテトラデカン酸、14-メチルヘキサデカン酸、16-メチルオクタデカン酸、14-メチルヘキサデセン酸及び16-メチルオクタデセン酸、並びにこれらの塩やエステルなどが挙げられる。本発明に好ましく用いられるアンテイソ脂肪酸は通常の方法により合成することができる例えば、特開2009-149546号公報参照。また、シグマアルドリッチ社等から市販のものを入手して用いることもできる。本発明の生乾き臭抑制剤のスクリーニング方法及び生乾き臭抑制剤の評価方法において、皮脂汚れ成分の存在下、前記4M3H生成能を有する微生物及び被験物質とを接触させ、該微生物を該被験物質及び皮脂汚れ成分と共にインキュベートする。インキュベート条件に特に制限はないが、25~35°C、3~72時間好ましくは8~72時間で加湿条件下でインキュベートすることが好ましい。さらに、微生物と被験物質とを接触させる際及び/又は微生物をインキュベートさせる際には、滅菌水、緩衝液、又はこれらに糖類、カゼイン製ペプトン、大豆製ペプトン、酵母エキス、無機塩類、pH調整剤、寒天等の培地成分を添加してもよい。あるいは、市販の培地をそのまま若しくは希釈して使用してもよい。また、液体状態でインキュベートをする場合は振とうすることが好ましく、固体状態でインキュベートする際は静置することが好ましい。本発明において、本発明に用いる4M3H生成能を有する微生物及び被験物質を皮脂汚れ成分が付着している繊維製品に添加して接触させ、該微生物を該被験物質及び皮脂汚れ成分と共にインキュベートさせてもよい。この場合、インキュベート条件に特に制限はないが、25~35°Cで、3~48時間好ましくは8~48時間静置してインキュベートすることが好ましい。また、前記皮脂汚れ成分は元々繊維製品に付着していてもよいし、アンテイソ脂肪酸等の皮脂汚れ成分を繊維製品に付着させてもよい。皮脂汚れ成分を繊維製品に付着させる場合、2×2cmの繊維製品に対して0.1~1mgの割合で皮脂汚れ成分を付着させるのが好ましい。前記微生物の繊維製品への添加量に特に制限はないが、102~105CFUcm2を繊維製品へ添加することが好ましい。本発明に用いる繊維製品の素材としては特に制限はなく、ウール、シルク、木綿等の天然素材、ポリエステル、ポリアミド等の化学繊維、及びこれらの組合せのいずれであってもよい。本発明において、繊維製品の素材は木綿であることが好ましい。さらに、皮脂汚れ成分を添加して使用する場合は、繊維製品は未使用であっても、一度以上使用した使用済のものでもよい。皮脂汚れ成分を添加せずに使用する場合は、一度以上使用したものをそのまま、又は洗濯した後に用いる。本発明において、皮脂汚れ成分を含む固体や溶液において前記微生物及び前記被験物質を接触させてもよい。具体的には、皮脂汚れ成分を含む寒天培地に被験物質を予め添加しておく、あるいは培地上に塗布しておき、さらに4M3H生成能を有する微生物を塗抹し、被験物質の存在下で前記微生物及び皮脂汚れ成分を接触させてもよいし、皮脂汚れ成分を含んでなる液体培地と被験物質とを混合し、そこに4M3H生成能を有する微生物を接種し、被験物質の存在下で前記微生物及び皮脂汚れ成分を接触させてもよい。ここで用いられる培地は、4M3H生成能を有する微生物種に応じて適宜選択すればよい。本発明において、前記4M3H生成能を有する微生物と皮脂汚れ成分との接触比混合比について特に制限はないが、終濃度104~108CFUの微生物に対してアンテイソ脂肪酸等の皮脂汚れ成分0.1~10mgを接触させるのが好ましい。本発明のスクリーニング方法及び評価方法において、前記微生物による生乾き臭原因物質の生成を検知することにより、生乾き臭抑制作用を有する被験物質を選択する。生乾き臭原因物質としては、生乾き臭原因物質となり得る前記4M3H生成能を有する微生物が生成する物質であればよく、4-メチル-3-ヘキセン酸4M3H、4-メチル-3ペンテン酸、4-メチル-3オクテン酸等が挙げられる。本発明において、4M3Hの生成を検知することが好ましい。本発明のスクリーニング方法及び評価方法において、生乾き臭原因物質の生成を検知する方法に特に制限はなく、官能評価等の定性的な方法によって行ってもよいし、カラムクロマトグラフィー等を用いて定量的に生乾き臭原因物質の生成を検知することもできる。また、特開2009-244094号公報に示すように、生乾き臭原因物質のカルボキシ基に発色団を導入し、呈色反応を利用して生乾き臭原因物質の有無や存在量を判定してもよい。具体的には、生乾き臭原因物質の検量線を予め作成しておき、この検量線を用いて機器分析を行ってもよいし、生乾き臭原因物質の変化体又は未変化体を滴定又は抽出等の化学分析により定量してもよい。また、官能評価により生乾き臭抑制剤の添加の有無によるニオイ強度の差やニオイの種類の変化により判定してもよい。本発明のスクリーニング方法において、4M3H生成能を有する微生物による生乾き臭原因物質の生成を検知し、生乾き臭抑制作用を有する被験物質を生乾き臭抑制剤として選択することができる。また、生乾き臭抑制剤の評価方法において、4M3H生成能を有する微生物による生乾き臭原因物質の生成を検知し、被験物質の生乾き臭抑制作用を評価することができる。本発明のスクリーニング方法及び評価方法で用いる被験物質としては、任意の物質を使用することができ、低分子化合物、高分子化合物のいずれでもよく、その種類は特に限定されない。被験物質の具体例としては、例えば、無機塩類、界面活性剤、タンパク質、抗体、ペプチド、ポリペプチド、オリゴヌクレオチド、ポリヌクレオチド、DNA、RNA、脂質、糖類、多糖類、天然物抽出物、香料等又はこれらの組み合わせが挙げられる。以下、本発明を実施例に基づきさらに詳細に説明するが、本発明はこれに限定されるものではない。試験例1生乾き臭原因物質の特定洗濯乾燥の後に生乾き臭が強く発生した木綿のタオルを家庭より回収して50gを裁断し、ジクロロメタン500mLよりニオイ成分を抽出後減圧濃縮した。さらに、1M水酸化ナトリウム水溶液200mLを抽出溶液に添加し、水層を回収し、2M塩酸200mL添加し酸性にした。この溶液に、ジクロロメタン200mLを加え有機層を減圧濃縮し、酸性成分の濃縮物を1mLに定容した。続いて、アジレント社製ガスクロマトグラフィーにゲステル社製PreparativeFractionCollectorPFC装置を接続したものを用い、濃縮物を下記の条件下でGC保持時間により分画し、目的成分周辺のGC30回分を内径6mm、長さ117mmのガラス管に充填した充填剤商品名:TENAXTA、ジーエルサイエンス社製200mgに捕集した。GC-PFC条件GC:Agilent6890N商品名、アジレント社製カラム:DB1商品名、アジレント社製、長さ30m、内径0.53mm、膜厚1μm40°C1min.hold→6°C/min.to60°C→4°C/min.to300°CInjectionvolume:2μLPFC:traptime18min.to24min、30timestrap:TENAXTA商品名、ジーエルサイエンス社製200mg最後にTENAXに捕集した目的成分をゲステル社製ThermalDesorptionsystemTDSをアジレント社製GC-MSに接続した装置にて、下記条件下で分析した。TDS-GC-MS条件GC:Agilent6890N商品名、アジレント社製MS:Agilent5973商品名、アジレント社製TDS脱着条件:250°C、パージ流量50mL/min、パージ時間3min.カラム:DBFFAP商品名、アジレント社製、長さ30m、内径250μm、膜厚0.25μm40°C1min.hold→6°C/min.to60°C→2°C/min.to240°C解析の結果、生乾き臭原因物質は4M3Hをはじめとする中級分岐脂肪酸であることが明らかとなった。試験例2生乾き臭原因菌の特定1菌株の単離洗濯乾燥の後に生乾き臭が発生した木綿のタオル又はバスタオルを裁断し、LP希釈液日本製薬社製を添加後、攪拌した溶液0.1mLをレシチンポリソルベート添加ソイビーンカゼインダイジェスト本明細書においてSCD-LPともいう寒天培地日本製薬社製に塗沫し、35°C、24時間培養後、得られたコロニーから微生物を単離した。単離した細菌株の同定は、16SrDNA遺伝子の上流領域約500bpの塩基配列、酵母株の同定は、LSUのD2領域の約200~500bp領域の塩基配列を決定し、当該塩基配列と基準株との同一性に基づき行なった。塩基配列の同一性は、遺伝子情報処理ソフトウェアClustalWを用いて算出した。なおモラクセラエスピーに関してはモラクセラオスロエンシスATCC19976の塩基配列を決定し、その塩基配列と比較することで同定した。各タオル又はバスタオルから単離された菌株を表1に示す。2繊維製品での生乾き臭再現試験上記で単離された各種菌株をそれぞれ生乾き臭が発生した木綿のタオル、あるいは使用後洗濯して保管していた木綿のタオルを滅菌処理したものに接種し、35°Cで24時間加湿条件下湿度100で培養後、生乾き臭の発生の有無を下記基準に基づいて、香料評価の訓練を受けた専門評価者N=3により、合意により判定した。1:生乾き臭の発生が非常に強い2:生乾き臭の発生が強い3:生乾き臭の発生が弱い4:生乾き臭が全くしないその結果を表1に示す。表1の結果から、すべての生乾き臭発生タオルバスタオルから、モラクセラエスピーが単離された。また、単離されたモラクセラエスピーは、その菌数も多かった。さらに、単離したモラクセラエスピーを生乾き臭が発生したタオルを滅菌処理したものに接種したところ、非常に強い生乾き臭が発生することが確認された。したがって、生乾き臭には本菌種などの特定の微生物が関与していることが明らかとなった。試験例34M3H生成能を有する微生物の選定前記試験例2に準じて単離、同定した菌株、環境土壌、住居内より定法によりソイビーンカゼインダイジェスト本明細書においてSCDともいう寒天培地又はPDA培地を用いて分離した後、単離同定した菌株、及び微生物供託機関から入手した微生物の4M3H生成能を測定した。なお、微生物供託機関から入手した菌株は下記の通りである。モラクセラオスロエンシスNCIMB10693株NCIMBNationalcollectionofindustrialandmarinebacteriaから購入、モラクセラオスロエンシスATCC19976株ATCCAmericanTypeCultureCollectionから購入、サイクロバクターインモビリスPsychrobacterimmobilisNBRC15733株、サイクロバクターパシフィセンシスNBRC103191株、サイクロバクターグラシンコラNBRC101053株、シュードモナスエルギノーサPseudomonasaeruginosaNBRC13275株、シュードモナスプチダPseudomonasputidaNBRC14164株、スフィンゴモナスヤノイクヤエNBRC15102株、ミクロコッカスルテウスMicrococcusluteusNBRC3333株、ブレブンディモナスディミヌタBrevundimonasdiminutaNBRC12697株、ロゼオモナスエリラタRoseomonasaerilataNBRC106435株、キュープリアビダスオキサラティカスNBRC13593株、シュードキサントモナスエスピーPseudoxanthomonassp.NBRC101033株、セラチアマルセセンスNBRC12648株、エンテロバクタークロアカEnterobactercloacaeNBRC3320株、コリネバクテリウムエフィシエンスCorynebacteriumefficiensNBRC100395株、エシェリキアコーライNBRC3972株、スタフィロコッカスアウレウスNBRC13276株、サッカロマイセスセレビジエNBRC1661株、カンジダアルビカンスCandidaalbicansNBRC1061株、アルガリゲネスフェカリスAlcaligenesfaecalisNBRC13111株、ブルクホルデリアセパシアNBRC15124株及びロドトルラムシラギノサNBRC0909株いずれもNBRCNITEBiologicalResourceCenterから購入、バチルスセレウスJCM2152株、バチルスサブティリスJCM1465株及びラクトバチルスプランタルムLactobacillusplantarumJCM1149株JCMから購入さらに、モラクセラ属細菌については、16SrDNA遺伝子領域の塩基配列について、配列番号1、配列番号2又は配列番号3に示す塩基配列との同一性について決定した。なお、配列番号1、配列番号2又は配列番号3に示す塩基配列は、それぞれ、モラクセラエスピー41株、モラクセラエスピー44株及びモラクセラオスロエンシスATCC19976株の16SrDNA遺伝子領域の塩基配列を示す。さらに、塩基配列の同一性は、遺伝子情報処理ソフトウェアClustalWを用いて算出した。なお、モラクセラエスピー41株は、2010年10月14日付で、独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センター茨城県つくば市東1-1-1つくばセンター中央第6に、受託番号FERMP22030として寄託された。その結果を表2に示す。1.使用済み繊維製品を用いた選抜入手した菌株をSCD液体培地日本製薬社製5mLに一白金耳接種し、35°Cで24時間振とう培養160rpmを行なった。培養後の菌体を遠心8000×g、10分して上清を取り除いた後、生理食塩水5mLに懸濁し、再度遠心8000×g、10分した後上清を取り除き、生理食塩水を用いてOD600=1.0となるように菌液を調製した。家庭生活の中で使用と洗濯を繰り返した木綿の中古タオルを5cm×5cmの正方形に切断し滅菌したものに前記各種菌液0.1mLを植菌し、加湿条件下で37°Cで24時間静置した。専門評価者N3により、24時間静置後の前記木綿の中古タオルの生乾き臭の有無を合意により判定した。評価基準は、生乾き臭が強く感じられる試料を◎、生乾き臭が感じられる試料を○、生乾き臭が若干感じられる試料を△、生乾き臭が全くない試料を×とした。その結果を表3に示す。2.皮脂汚れ成分を塗布した繊維製品を用いた選抜特開2009-149546号公報に準じて、14-メチルヘキサデカン酸を下記の2工程の反応で合成した。a工程12-ドデカノリド11.9g60.0mmol、32臭化水素酢酸溶液243g96.0mmol、1.6当量を、テフロン登録商標で保護された100mLオートクレーブに入れ、窒素置換した後密閉し、60°Cのオイルバスを用いて、16時間マグネチックスターラーで攪拌した。冷却後、水14mLを加え、熱ヘキサン200mLを用い、分液ロートに移送した。イオン交換水で洗浄後、硫酸マグネシウムで乾燥し、ろ過、n-ヘキサンで晶析することで、12-ブロモドデカン酸14.4g収率86を得た。b工程次に、還流冷却管、50mL滴下ロート、マグネチックスターラー、温度センサーを備えた100mLの4口フラスコに、12-ブロモドデカン酸5.0g17.9mmol及びトリフェニルホスフィン関東化学社製28.2mg0.006eqを入れ、減圧乾燥した。アルゴン雰囲気下、臭化銅Iアルドリッチ社製77.1mg0.03当量、無水テトラヒドロフラン10mLを加えた。室温下、2-メチルブチルマグネシウムブロミド39.5mL3当量、1.36Nテトラヒドロフラン溶液を、1時間で滴下した。1時間攪拌した後、1N塩酸水溶液50mLを加え、ヘキサン100mLで2回抽出した。イオン交換水50mLで2回洗浄した後、硫酸マグネシウムで乾燥した。ろ過、減圧濃縮して、粗生成物3.9gを得た。ガスクロマトグラフィーカラム:アジレント社製、商品名:Ultra-2、30m×0.2mm×0.33μm、DET300°C、INJ300°C、カラム温度100°C→300°C、10°C/分で、内標にオクタデカンを用い、定量した結果、収率79であった。このようにして、12-ドデカノリドから14-メチルヘキサデカン酸を全収率68で得た。また純度は98であった。16メチルオクタデカン酸を、上記に示す14-メチルヘキサデカン酸の合成工程のa工程において、12-ドデカノリドを15-ペンタドデカノリドに換え、b工程にて2-メチルブチルマグネシウムブロミドをsec-ブチルマグネシウムブロミドに換えて同様の操作で合成し、15-ペンタドデカノリドから16-メチルオクタデカン酸を全収率84で得た。また純度は95であった。各菌株をSCD液体培地日本製薬社製5mLに一白金耳接種し、35°Cで24時間振とう培養160rpmを行なった。培養後の菌体を遠心8000×g、10分して上清を取り除いた後、生理食塩水5mLに懸濁し、再度遠心8000×g、10分した後上清を取り除き、生理食塩水を用いてOD600=1.0となるように菌液を調製した。2cm×2cmの正方形に切断した木綿の平織り布に、皮脂汚れ成分として、前述の方法で合成した14-メチルヘキサデカン酸又は16-メチルオクタデカン酸0.5mgをメタノール0.1mLに溶解した溶液を塗布し、その後メタノールの乾固を行った。上記木綿の平織り布に、前記各種菌液0.1mLを植菌し、加湿条件下で37°Cで24時間静置し、下記の4M3Hの定量及び生乾き臭の官能評価を行った。14M3Hの定量24時間静置後の前記タオルに、メタノール10mLを添加し、そのうちの1mLとADAM9Anthrydiazomethanene、フナコシ社製、0.1wv1mLとを混合し、室温で60分放置し、誘導体化を行なった。その後、10μL溶液について、LC-FL液体クロマトグラフィー装置:HITACHIELITELaChrom商品名、日立社製、カラム:Lichrospher100RP8商品名、アジレント社製、5μm×125mm×4mmφ、カラム温度:40°C、溶離剤:アセトニトリル/水=7/3体積比の混合溶液、流速:1.0mL/min、検出器:励起波長365nm、測定波長412nmを用いて解析を行うことで、生成した4M3Hの定量を行った。4M3Hの生成量について、生成した4M3Hの量が1μgより多かった試料を◎、01μgより多く1μg以下の試料を○、0μgより多く0.1μg以下の試料を△、全く検出されなかった試料を×として評価した。14-メチルヘキサデカン酸を塗布した場合の結果を表4に、16-メチルオクタデカン酸を塗布した場合の結果を表5にそれぞれ示す。2生乾き臭の官能評価専門評価者N3により、24時間静置後の前記木綿平織り布の生乾き臭の有無を判定した。評価基準は、生乾き臭が強く感じられる試料を◎、生乾き臭が感じられる試料を○、生乾き臭が若干感じられる試料を△、生乾き臭が全くない試料を×とした。14-メチルヘキサデカン酸を塗布した場合の結果を表4に、16-メチルオクタデカン酸を塗布した場合の結果を表5にそれぞれ示す。表3、4及び5の結果から、種々の微生物の中でも、モラクセラ属細菌、アシネトバクター属細菌、シュードモナス属細菌、バチルス属細菌、スフィンゴモナス属細菌、キュープリアビダス属細菌、ラルストニア属細菌、サイクロバクター属細菌、セラチア属細菌、エシェリキア属細菌、スタフィロコッカス属細菌、ブルクホルデリア属細菌、サッカロマイセス属酵母、ロドトルラ属酵母等、特定の微生物が4M3H生成能を有することがわかる。さらには、このような4M3H生成能を有する微生物が生乾き臭の発生に関与していることが明らかとなった。さらに、本発明に用いる4M3H生成能を有する微生物は、上記に示すように、繊維製品の官能評価を行い、その結果生乾き臭を発した繊維製品から微生物を採取することもできるし、繊維製品に存在する微生物を採取し、採取した微生物の4M3H生成能を測定し、4M3H生成能を有する微生物を選択することもできる。さらには、表2~5からわかるように、4M3H生成能を有する微生物の中には、特定の遺伝子配列の相同性が非常に高いものがあるので、特定の遺伝子配列の相同性を比較することで、4M3H生成能を有する微生物を選択することもできる。実施例1モラクセラオスロエンシスNCIMB10693株、モラクセラエスピー41株、サイクロバクターパシフィセンシスNBRC103191株、サイクロバクターグラシンコラNCIMB101053株、シュードモナスアルカリゲネスNo41株、アシネトバクターカルコアセティカスHH2BD49株、サッカロマイセスセレビジエNBRC1661株、ロドトルラムシラギノーサNBRC0909株及びロドトルラスルーフィエ13c株の各菌株をSCDソイビーンカゼインダイジェストの液体培地日本製薬社製5mLに一白金耳接種し、35°Cで24時間振とう培養160rpmを行なった。培養後の菌体を遠心8000×g、10分して上清を取り除いた後、生理食塩水5mLに懸濁し、再度遠心8000×g、10分した後上清を取り除き、生理食塩水を用いてOD600=0.1となるように菌液を調製した。2cm×2cmの正方形に切断した加圧滅菌後の木綿の平織り布に、試験例3で合成した14-メチルヘキサデカン酸0.1mgをメタノール0.1mLに溶解した溶液を塗布し、その後メタノールの乾固を行った。さらに、上記布に下記表6に示す化合物の10ppm又は100ppmの水溶液を0.1mL塗布した。コントロールとして、下記化合物の代わりに滅菌水を塗布した布も調製した。上記のように調製した木綿の平織り布に、前記各種菌液0.1mLを植菌し、加湿条件下で37°Cで24時間静置し、下記の評価を行った。14M3Hの定量試験例3と同様の方法により、4M3Hの定量を行い、被検物質として滅菌水を塗布したものの4M3H生成量を基準に下記基準に基づいてその他の被検物質塗布時の4M3H生成量を評価した。A:被検物質塗布時の4M3H生成量<滅菌水塗布時の4M3H生成量の1100B:滅菌水塗布時の4M3H生成量の1100≦被検物質塗布時の4M3H生成量<滅菌水塗布時の4M3H生成量の110C:滅菌水塗布時の4M3H生成量の110≦被検物質塗布時の4M3H生成量<滅菌水塗布時の4M3H生成量D:滅菌水塗布時の4M3H生成量≦被検物質塗布時の4M3H生成量その結果を表7-1及び表7-2に示す。2官能評価専門評価者N=3により、下記基準に基づいて生乾き臭の官能評価を合意により行った。A:生乾き臭が抑制され、生乾き臭がほとんど感じられなかった。B:生乾き臭がほぼ抑制された。C:生乾き臭がやや抑制された。D:生乾き臭はほとんど抑制されず、生乾き臭が強く感じられた。その結果を表7-1及び表7-2に示す。表7-1及び表7-2に示すように、本発明によれば、生乾き臭抑制剤のスクリーニング、及び生乾き臭抑制剤の評価が可能となる。実施例2モラクセラオスロエンシスNCIMB10693株、モラクセラエスピー4-1株、アシネトバクターカルコアセティカスHH2BD49株及びシュードモナスアルカリゲネスNo41株の各菌株をSCDの液体培地日本製薬社製5mLに一白金耳接種し、35°Cで24時間振とう培養160rpmを行なった。培養後の菌体を遠心8000×g、10分して上清を取り除いた後、生理食塩水5mLに懸濁し、再度遠心8000×g、10分した後上清を取り除き、生理食塩水を用いてOD600=0.1となるように菌液を調製した。各家庭で洗濯した後の使用済の木綿のバスタオル又はタオルを2cm×2cmに裁断し、加圧滅菌した。さらに、上記バスタオル又はタオルに、前記表6に示す化合物の10ppm又は100ppmの水溶液を0.1mL塗布した。コントロールとして、下記化合物の代わりに滅菌水を塗布した布も調製した。上記のように調製したバスタオル又はタオルに、前記各種菌液0.1mLを植菌し、加湿条件下で37°Cで24時間静置し、実施例1と同様の方法及び評価基準により、生乾き臭の官能評価を行った。その結果を表8に示す。表8に示すように、本発明の生乾き臭抑制剤のスクリーニング方法及び評価方法において、繊維製品として洗濯後の使用済繊維製品を用いても、生乾き臭抑制剤のスクリーニング、及び生乾き臭抑制剤の評価が可能となる。実施例3モラクセラオスロエンシスNCIMB10693株及びシュードモナスアルカリゲネスNo41株の各菌株をSCDの液体培地日本製薬社製5mLに一白金耳接種し、35°Cで24時間振とう培養160rpmを行なった。培養後の菌体を遠心8000×g、10分して上清を取り除いた後、生理食塩水5mLに懸濁し、再度遠心8000×g、10分した後上清を取り除き、生理食塩水を用いてOD600=0.1となるように菌液を調製した。SCD液体培地日本製薬社製1mLに、試験例3で合成した14-メチルヘキサデカン酸0.1mgを添加した。これに、前記表6に示す化合物の10ppm又は100ppmの水溶液を0.1mL添加した。コントロールとして、下記化合物の代わりに滅菌水を添加した液体培地も調製した。上記のように調製した液体培地に、前記各種菌液0.1mLを植菌し、37°Cで24時間振とう培養を行い、実施例1と同様の方法及び評価基準により、生乾き臭の官能評価を行った。その結果を表9に示す。表9に示すように、本発明の生乾き臭抑制剤のスクリーニング方法及び評価方法において、皮脂汚れ成分の存在下において、4M3H生成能を有する微生物及び被験物質を液体培地中で接触させることによっても、生乾き臭抑制剤のスクリーニング、及び生乾き臭抑制剤の評価が可能となる。実施例4モラクセラオスロエンシスNCIMB10693株をSCDの液体培地日本製薬社製5mLに一白金耳接種し、35°Cで24時間振とう培養160rpmを行なった。培養後の菌体を遠心8000×g、10分して上清を取り除いた後、生理食塩水5mLに懸濁し、再度遠心8000×g、10分した後上清を取り除き、生理食塩水を用いてOD600=0.1となるように菌液を調製した。SCD寒天培地に、試験例3で合成した14-メチルヘキサデカン酸0.1mgを0.1mLメタノールに溶解した溶液を塗布した。これに、前記表6に示す化合物の10ppm又は100ppmの水溶液を0.1mL塗布した。コントロールとして、下記化合物の代わりに滅菌水を塗布した寒天培地も調製した。上記のように調製した寒天培地に、前記各種菌液0.1mLを植菌し、37°Cで24時間培養を行い、実施例1と同様の方法及び評価基準により、生乾き臭の官能評価を行った。その結果を表10に示す。表10に示すように、本発明の生乾き臭抑制剤のスクリーニング方法及び評価方法において、皮脂汚れ成分の存在下の存在下において、4M3H生成能を有する微生物及び被験物質を寒天培地で接触させることによっても、生乾き臭抑制剤のスクリーニング、及び生乾き臭抑制剤の評価が可能となる。"