大豆残渣および糖類を含有する培地中で細菌を培養し、培養上清からセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を採取する、セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造方法。前記細菌は、Bacillus属の細菌、Lactobacillus属の細菌、Acetobacter属の細菌、及びLeuconostoc属の細菌から選ばれる何れかのものである、請求項1に記載のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造方法。前記Bacillus属の細菌が、Bacillussubtilis、Bacillusacidicola、Bacillusgibsonii、又はBacilluslicheniformisである、請求項2に記載のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造方法。前記Lactobacillus属の細菌が、Lactobacillusbrevis、Lactobacillusfarciminis、Lactobacilluspentosus、Lactobacillusplantarum、Lactobacilluscoryniformis、Lactobacilluscurvatus、又はLactobacillusalimentariusである、請求項2に記載のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造方法。前記Acetobacter属の細菌が、Acetobacteracetiである、請求項2に記載のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造方法。前記Leuconostoc属の細菌が、Leuconostocmesenteroidesである、請求項2に記載のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造方法。前記糖類は葡萄糖である、請求項1~6の何れか一項に記載のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造方法。前記培地は、大豆残渣、葡萄糖及び水からなるものである、請求項7に記載のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造方法。前記培地の中に前記大豆残渣を8~12wv、前記糖類を0.8~1.2wv含有する、請求項8に記載のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造方法。前記培養の温度は27~35°Cである、請求項1~9の何れか一項に記載のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造方法。前記培養時間は1~7日間である、請求項1~10の何れか一項に記載のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造方法。前記培養して得られた培養液を遠心分離により、前記上清を得る、請求項1~11の何れか一項に記載のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造方法。前記遠心分離した上清に、エタノールを加え、セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤をとする、請求項12に記載のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造方法。上記エタノールを加えたものを、さらに、超音波処理、遠心分離、ろ過、真空乾燥処理で精製して、セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤として得る、請求項13に記載のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造方法。請求項1~14のいずれかに記載の製造方法によって得られるセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤。本発明は、セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を安価で効率良く製造する方法を提供することを課題とする。本発明者は、上記課題を解決するため鋭意検討した結果、大豆残渣および糖類を含有する培地中で細菌を培養して、セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を安価で効率良く得ることができることを見出し、本発明をなすに至ったものである。本発明は、大豆残渣および糖類を含有する培地中で細菌を培養し、培養上清からセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を採取する、セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造方法を提供する。また、本発明は、大豆残渣および糖類を含有する培地中で細菌を培養して得られる、大豆残渣の発酵エキスのセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤に関する。また、本発明は、大豆残渣および糖類を含有する培地中で細菌を培養して得られる、大豆残渣の発酵エキスのセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤としての使用に関する。また、本発明は、大豆残渣および糖類を含有する培地中で細菌を培養して得られる、大豆残渣の発酵エキスのセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造のための使用に関する。本発明で用いられる細菌は、Bacillus属の細菌、Lactobacillus属の細菌、Acetobacter属の細菌、及びLeuconostoc属の細菌から選ばれる何れかのものであってもよい。本発明に係る製造方法によれば、特定微生物を利用し大豆残渣のような入手が容易であるものを培地の主原料として用いることで、セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を安価で効率良く得ることができる。当該促進剤は、皮膚の持つセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生能力を効率的に向上させることができるため、皮膚の保湿機能を有効に向上させることもできる。本発明の製造方法は、大豆残渣および糖類を含有する培地中で細菌を培養し、培養上清からセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を採取する。本発明で用いられる細菌は、Bacillus属の細菌、Lactobacillus属の細菌、Acetobacter属の細菌、及びLeuconostoc属の細菌から選ばれる何れかのものであってもよい。本発明に使用されるBacillus属に属する微生物としては、Bacillussubtilis、Bacillusacidicola、Bacillusgibsonii、Bacilluslicheniformis、Bacillusalcalophilus、Bacilluscereus、Bacilluspumilus、Bacillussphaericus、Bacillusdiffusus、Bacillusglobigii、Bacillusamyloliquefaciens、Bacilluscoagulans、Bacillusmegaterium、Bacillusmucilaginosus、Bacillusmycoides、Bacillusthuringiensis、Bacilluscirculans、Bacillusmucilaginosus、Bacillusstearothermophilus等が挙げられる。このうち、得られる成分がより高いセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進効果を有するという観点から、Bacillussubtilis、Bacillusacidicola、Bacillusgibsonii、Bacilluslicheniformisが好ましい。本発明に使用されるLactobacillus属に属する微生物としては、Lactobacillusbrevis、Lactobacillusfarciminis、Lactobacilluspentosus、Lactobacillusplantarum、Lactobacilluscoryniformi、Lactobacilluscurvatus、Lactobacillusalimentarius、Lactobacillusrhamnosus、Lactobacilluscasei、Lactobacillusbuchneri、Lactobacilluscellobiosus、Lactobacillusacidophilus、Lactobacillusmurinus、Lactobacillusfermentum、Lactobacillushelveticus等が挙げられる。このうち、得られる成分がより高いセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進効果を有するという観点から、Lactobacillusbrevis、Lactobacillusfarciminis、Lactobacilluspentosus、Lactobacillusplantarum、Lactobacilluscoryniformi、Lactobacilluscurvatus、Lactobacillusalimentariusが好ましい。本発明に使用されるAcetobacter属に属する微生物としては、Acetobacteraceti、Acetobactertropicalis、Acetobacterpasteurianus等が挙げられる。このうち、、得られる成分がより高いセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進効果を有するという観点から、Acetobacteracetiが好ましい。本発明に使用されるLeuconostoc属に属する微生物としては、Leuconostocmesenteroides、Leuconostoclactis、Leuconostocgelidum、Leuconostoccarnosum、Leuconostocfallax、Leuconostoccitreum、Leuconostocargentinum、Leuconostocpseudomesenteroides等が挙げられる。このうち、得られる成分がより高いセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進効果を有するという観点から、Leuconostocmesenteroidesが好ましい。本発明にかかる微生物細菌は、何れも、中国普通微生物保蔵管理中心CGMCC及び中国典型培養物保蔵中心CCTCC、中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMCultureInformationCenterofIndustrialMicroorganismofChinaUniversitiesなどの商業ルートで購入できるのもである。また、本発明の製造方法においては、上記微生物を1種類単独で又は2種類以上を組み合わせて用いることができる。本発明において用いる培地としては、大豆残渣と糖類とを含有するものである。大豆残渣も糖類も入手やすい原料であるため、本発明の培地が従来より安価上で優れた利点を有する。また、その他に1のペプトン、05の酵母粉等を適宜添加してもよい。本発明で使われる大豆残渣は、大豆を水に浸漬し、水を吸収させて、粉砕、濾過を経て、水を除去して、乾燥して、得られたものが好ましい。食品産業において豆乳を搾り取ったという大豆製品を製造する工程で残した大豆残渣、例えばおから等を用いることも可能である。糖類としては、例えば葡萄糖、麦芽糖、蔗糖などが挙がられる。また、それらが、いずれかを単独、または混合して使用できる。セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進効果を向上させるという観点から、葡萄糖を好適に用いることができる。本発明においては、セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進の効果を高めるという観点から、培地は、大豆残渣、葡萄糖及び水からなるのが好ましい。その中に大豆残渣を5~20wv、より好ましくは8~12wv、葡萄糖を0.2~2wv、より好ましくは08~1.2wv含有することが好ましい。細菌との微生物の生理的な特性、及びセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進の効果を高める観点から、27~35°Cの培養温度で上記培養を行うことが好ましい。細菌との微生物の生理的な特性、及びセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進の効果を高める観点から、1~7日、より好ましくは48~96時間、更に好ましくは68~76時間で培養するのが好ましい。製品の純度を高める観点から、前記培養により得られた培養液を精製して、上清を得る。精製の方法としては、ろ過、遠心分離、イオン交換または吸着クロマトグラフィー、溶媒抽出、結晶化などの通常用いられる操作を必要に応じて適宜組み合わせて行われてもよい。また、遠心分離などにより上清を得ることが好ましい。遠心分離の回転数は、2000~4000rpmが好ましく、2500~3500rpmがより好ましい。遠心分離の時間は、0~20分が好ましく、5~15分がより好ましい。遠心分離して得られた上記上清にエタノールを加えて殺菌し、本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤としてもよい。また、遠心分離して培養液から菌体を除去し、次いで超音波処理し、遠心分離して上清を回収する。再び、回収した上清をろ過して夾雑物などを除き、さらに真空で乾燥処理して本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤としてもよい。本発明の細菌を培養し、培養上清から得た大豆残渣の発酵エキスは、正常ヒト角化細胞において、セラミド及び/又はグルコシルセラミドの量を増加させる作用を有する。従って、本発明の細菌を培養し、培養上清から得られた大豆残渣の発酵エキスは、セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進のための治療目的又は非治療目的の使用ができ、セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤としての治療目的又は非治療目的の使用もできる。非治療目的の使用には、美容目的の使用や、健康状態の維持のための使用などが含まれる。また、上記のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進のための、治療目的の使用と、非治療目的の使用は、分けて行われることもできる。また、本発明の細菌を培養し、培養上清から得た大豆残渣の発酵エキスは、セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を製造するために使用できる。本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤は、角質層中のセラミド及び/又はグルコシルセラミドを増加させ、皮膚のバリア機能及び保湿機能を回復及び向上するための医薬品、医薬部外品、化粧品等としても使用できる。また、本発明のセラミド又はグルコシルセラミド産生促進剤は、セラミド又はグルコシルセラミド産生促進をコンセプトとし、必要に応じてその旨を表示した医薬部外品、化粧品として使用することもできる。本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の使用形態としては、培養細胞へ添加するための添加剤とすることができ、皮膚洗浄剤、メイクアップ化粧料などの皮膚外用剤へ配合することもできる。例えば、ローション、乳液、ゲル、クリーム、軟膏剤等の種々の形態で提供することができる。外用剤の基剤としては、公知の外用基剤でよく、特に限定されない。このような種々の皮膚外用剤を調製するには、本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を単独で、又は、皮膚洗浄剤、メイクアップ化粧料などの皮膚外用剤に配合される、通常の油性成分、保湿剤、粉体、色素、乳化剤、可溶化剤、紫外線吸収剤、増粘剤、薬効成分、香料、防菌防黴剤、植物抽出物、アルコール類等を適宜組み合わせて用いることができる。本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を、培養表皮細胞系へ添加してセラミド及び/又はグルコシルセラミド合成を促進する場合の添加量は、促進剤の乾燥物固形分換算として、0.0001~10wv、特に0.001~5wvが好ましい。添加量が0.001wv以上であると、産生促進の効果を十分にすることになる。添加量が10wv以下であると、表皮細胞への刺激が少ないという点で好ましい。本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の皮膚外用剤への配合量は、大豆残渣の発酵エキスの乾燥物固形分換算として、セラミド及び/又はグルコシルセラミド合成を十分に促進して皮膚の保湿能力を効率的に高め、しかも培養物の色や臭いが出にくいことから、全皮膚外用剤の0.01~20wvとするのが好ましく、特に好ましくは0.1~10wvである。次に、本発明を実施例により詳しく説明するが、本発明の範囲はこれらに限定されるものではない。なお、実施例に使用された微生物が、いずれも江南大学から購入され、中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに受託されていたものである。実施例1-1<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>まず、以下の方法で培地を調製した。大豆を水に入れ、12時間含浸し、大豆に水を十分に吸収させた。水を吸収した大豆を研削して粉砕し、濾過、滴り乾燥し、大豆残渣を得た。当該大豆残渣を、大豆残渣の濃度が10wv、ブドウ糖の濃度が1wvになるように、ブドウ糖及び水と混合して、培地とした。次いで、上記培地100mlを三角フラスコに入れ、Bacillussubtilis中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMB1677として受託されている。を規定の量で接種し、30°Cで3日間培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、当該EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料1-A、1-Bとし、さらに、試料1-A、1-Bをそれぞれ50vvEtOHで溶解し、1vv及び01vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の評価>細胞培養まず、正常ヒトの活性化角化細胞CascadeCoLtdを初代細胞として、75cm2の培養フラスコ増殖因子を含有する培地2mlに、7°C、5CO2のインキュベーターにて80~90コンフルエントの状態に達するまで培養した。継代細胞を175cm2の培養フラスコに80~90コンフルエントの状態に達するまでに持続培養した。継代培養した後のヒト表皮角化細胞を12wellPlate細胞数1×105個mLに2mLずつ播種し、37°C、5CO2のインキュベーターにて80~90コンフルエントの状態に達するまで持続培養した。次いで、上記12wellPlateにおいて増殖因子を含有しない培地を変更し、本発明の製品試料1-A、1-B及びコントロール50vvのエタノール溶液を当該12wellPlaten2に添加した。同じ条件で3日間培養した。その後、上清の培養液を除去し、PBS2mLWellにて細胞を2回洗浄した後、1mLPBSを入れ、各々の細胞をセルハーベスターで試験管に回収した。それを、後のセラミド、グルコシルセラミド及び蛋白質の量を解析するための試料とした。セラミドグルコシルセラミド産生促進効果の確認前記回収された細胞を含むPBS液に、まず、メタノール:クロロホルム2.5ml:1.25ml加え攪拌し、次に、20分間振とうした。その後、遠心分離3000rpm、5分を行い、上清aと沈殿bを取り分けて、その上清aをセラミドグルコシルセラミド量の解析に供し、沈殿bを次のタンパク量解析に供した。1セラミドグルコシルセラミド量の解析上清aにPBS:クロロホルム1.25ml:1.25mlを入れ、20分間振動し、遠心分離3000rpm、5分を行い、下相にあるクロロホルム層を単離、回収した。回収されたクロロホルム層を30°C、窒素雰囲気で乾固させた。乾燥品をクロロホルム-メタノール混合溶媒容量比=25ml:125ml100μlに溶解し、下記の薄層クロマトグラフィーによりセラミド量及びグルコシルセラミド量の定量に供した。セラミド又はグルコシルセラミド標準品と試料溶液とを乾燥のTLC板に入れ、展開溶媒であるクロロホルム:メタノール:酢酸=190:9:1vvvで薄層クロマトグラフィーを行った。展開剤がTCL板のトップに到達した後、ドライヤーで展開剤を乾燥した。次いで上記操作を1回繰り返した。その後、展開溶媒であるクロロホルム:メタノール:アセトン=76:20:4vvvで薄層クロマトグラフィーを行った。展開剤がTCL板のボタムからの2.5cmの位置に到達した後、展開を停止し、ドライヤーで展開剤を乾燥した。硫酸銅のリン酸溶液を吹き、乾燥して、TCL板を180°Cのヒータに置き7分間加熱して顕色させた。顕色されたTLC板をスキャンしてセラミド又はグルコシルセラミドの量それぞれをCer及びGlyCerとし、単位μgmLを解析した。2タンパク量の解析細胞中のセラミド量及びグルコシルセラミド量を表示するためにタンパク量の解析を行った。上記沈殿bに、900μlSDSドデシルスルホン酸ナトリウム溶液を入れ、混合し、60°Cで2時間加熱した後、タンパク質を変性降解させ、冷却した。次いで、100μl2NHClを加え、BCAKit法タンパク量の解析用のキットによりタンパク量Proと記する。μgmLを測定した。3解析の結果本発明品とコントロールの試料のそれぞれに対して、下式のように、CerProとGlyCerProを測定した。前記コントロールのCerProとGlyCerProのそれぞれを1とした場合の、本発明のCerProとGlyCerProの相対値を算出して表1に示した。また、前記コントロールのwellあたりのタンパク量を100とした場合の、本発明のwellあたりのタンパク量の相対値Proを算出して、それによりwellあたりのセラミドの量及びグルコシルセラミド量コントロールに対する相対量を求めた。合わせて表1に示した。CerWellCerPro×ProGlyCerWellGlyCerPro×Proなお、CerPro又はCerWellが1コントロールよりも高い場合、当該試料がセラミド産生促進効果を有すると見なされる。また、GlyCerPro又はGlyCerWellが1コントロールよりも高い場合、当該試料がグルコシルセラミド産生促進効果を有すると見なされる。表1から明らかなように、実施例1-1の試料1-A、1-Bは、セラミド及びグルコシルセラミド産生促進効果が認められた。実施例1-2実施例1-1に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Bacillus属の微生物として、Bacillussubtilis中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMB1923として受託されている。を使用した以外、実施例1-1と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、当該EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料1-C、1-Dとし、さらに、試料1-C、1-Dをそれぞれ50vvEtOHで溶解し、1vv及び01vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例1-1と同様にして、試料1-C、1-Dのセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表1に示した。表1から明らかなように、実施例1-2の試料1-C、1-Dは、セラミド及びまたはグルコシルセラミド産生促進効果が認められた。実施例1-3実施例0051に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Bacillus属の微生物として、Bacillusacidicola中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMB1297として受託されている。を使用した以外、実施例1-1と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、1mlの混合液を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料1-Eとし、4°Cの冷蔵庫で保存して、細胞培養に供する。上記EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料1-F、1-Gとし、さらに、試料1-F、1-Gをそれぞれ50vvEtOHで溶解し、1vv及び01vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例1-1と同様にして、試料1-E、1-F、1-Gのセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表1に示した。表1から明らかなように、実施例1-3の試料1-E、1-Gは、セラミド産生促進効果が認められた。実施例1-4実施例1-1に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Bacillus属の微生物として、Bacillusgibsonii中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMB1171として受託されている。を使用した以外、実施例1-1と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、1mlの混合液を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料1-Hとし、4°Cの冷蔵庫で保存して、細胞培養に供する。上記EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料1-I、1-Jとし、さらに、試料1-I、1-Jをそれぞれ50vvEtOHで溶解し、1vv及び01vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例1-1と同様にして、試料1-H、1-I、1-Jのセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表1に示した。表1から明らかなように、実施例1-4の試料1-H、1-I、1-Jは、セラミド及びまたはグルコシルセラミド産生促進効果が認められた。実施例1-5実施例1-1に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Bacillus属の微生物として、Bacilluslicheniformis中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMB1294として受託されている。を使用した以外、実施例1-1と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、1mlの混合液を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料1-Kとし、4°Cの冷蔵庫で保存して、細胞培養に供する。上記EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料1-L、1-Mとし、さらに、試料1-L、1-Mをそれぞれ50vvEtOHで溶解し、1vv及び01vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例1-1と同様にして、試料1-K、1-L、1-Mのセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表1に示した。表1から明らかなように、実施例1-5の試料1-K、1-L、1-Mは、セラミド及びまたはグルコシルセラミド産生促進効果が認められた。実施例1-6実施例1-1に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Bacillus属の微生物として、Bacilluslicheniformis中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMB1282として受託されている。を使用した以外、実施例1-1と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、1mlの混合液を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料1-Nとし、4°Cの冷蔵庫で保存して、細胞培養に供する。上記EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料1-O、1-Pとし、さらに、試料1-O、1-Pをそれぞれ50vvEtOHで溶解し、1vv及び01vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例1-1と同様にして、試料1-N、1-O、1-Pのセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表1に示した。表1から明らかなように、実施例1-6の試料1-N、1-O、1-Pは、セラミド及びまたはグルコシルセラミド産生促進効果が認められた。実施例1-7実施例1-1に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Bacillus属の微生物として、Bacilluslicheniformis中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMB1298として受託されている。を使用した以外、実施例1-1と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、当該EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料1-Q、1-Rとし、さらに、試料1-Q、1-Rをそれぞれ50vvEtOHで溶解し、1vv及び01vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例1-1と同様にして、試料1-Q、1-Rのセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表1に示した。表1から明らかなように、実施例1-7の試料1-Q、1-Rは、グルコシルセラミド産生促進効果が認められた。なお、試料1-A~1-Rについて、それらを上記ヒトの活性化角化細胞を含む12wellPlateに加えることを行わない即ち、上記細胞培養を行わないままで、セラミド量及びグルコシルセラミド量の解析を行った。上記以外は、上記実施例1-1と同様にした。その結果は、試料1-A~1-Rの何れかの自身にもセラミド又はグルコシルセラミドが存在しないことが確認された。これから、本発明の製品自身には、セラミド又はグルコシルセラミドが存在しないが、本発明の製品が、セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進の効果を有し、セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤として用いることが分かる。実施例2-1<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>まず、以下の方法で培地を調製した。大豆を水に入れ、12時間含浸し、大豆に水を十分に吸収させた。水を吸収した大豆を研削して粉砕し、濾過、滴り乾燥し、大豆残渣を得た。当該大豆残渣を、大豆残渣の濃度が10wv、ブドウ糖の濃度が1wvになるように、ブドウ糖及び水と混合して、培地とした。次いで、上記培地100mlを三角フラスコに入れ、Lactobacillusbrevis中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMB1257として受託されている。を規定の量で接種し、30°Cで3日間培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、1mlの混合液を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2-A1とし、4°Cの冷蔵庫で保存して、細胞培養に供する。上記EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2-A2、2-A3とし、さらに、試料2-A2、2-A3をそれぞれ50vvEtOHで溶解し、1vv及び01vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の評価>細胞培養まず、正常ヒトの活性化角化細胞CascadeCoLtdを初代細胞として、75cm2の培養フラスコ増殖因子を含有する培地2mlに、7°C、5CO2のインキュベーターにて80~90コンフルエントの状態に達するまで培養した。継代細胞を175cm2の培養フラスコに80~90コンフルエントの状態に達するまでに持続培養した。継代培養した後のヒト表皮角化細胞を12wellPlate細胞数1×105個mLに2mLずつ播種し、37°C、5CO2のインキュベーターにて80~90コンフルエントの状態に達するまで持続培養した。次いで、上記12wellPlateにおいて増殖因子を含有しない培地を変更し、本発明の製品試料2-A1、2-A2、2-A3及びコントロール50vvのエタノール溶液を当該12wellPlaten2に添加した。同じ条件で3日間培養した。その後、上清の培養液を除去し、PBS2mLWellにて細胞を2回洗浄した後、1mLPBSを入れ、各々の細胞をセルハーベスターで試験管に回収した。それを、後のセラミド、グルコシルセラミド及び蛋白質の量を解析するための試料とした。セラミドグルコシルセラミド産生促進効果の確認前記回収された細胞を含むPBS液に、まず、メタノール:クロロホルム2.5ml:1.25ml加え攪拌し、次に、20分間振とうした。その後、遠心分離3000rpm、5分を行い、上清aと沈殿bを取り分けて、その上清aをセラミドグルコシルセラミド量の解析に供し、沈殿bを次のタンパク量解析に供した。1セラミドグルコシルセラミド量の解析上清aにPBS:クロロホルム1.25ml:1.25mlを入れ、20分間振動し、遠心分離3000rpm、5分を行い、下相にあるクロロホルム層を単離、回収した。回収されたクロロホルム層を30°C、窒素雰囲気で乾固させた。乾燥品をクロロホルム-メタノール混合溶媒容量比=25ml:125ml100μlに溶解し、下記の薄層クロマトグラフィーによりセラミド量及びグルコシルセラミド量の定量に供した。セラミド又はグルコシルセラミド標準品と試料溶液とを乾燥のTLC板に入れ、展開溶媒であるクロロホルム:メタノール:酢酸=190:9:1vvvで薄層クロマトグラフィーを行った。展開剤がTCL板のトップに到達した後、ドライヤーで展開剤を乾燥した。次いで上記操作を1回繰り返した。その後、展開溶媒であるクロロホルム:メタノール:アセトン=76:20:4vvvで薄層クロマトグラフィーを行った。展開剤がTCL板のボタムからの2.5cmの位置に到達した後、展開を停止し、ドライヤーで展開剤を乾燥した。硫酸銅のリン酸溶液を吹き、乾燥して、TCL板を180°Cのヒータに置き7分間加熱して顕色させた。顕色されたTLC板をスキャンしてセラミド又はグルコシルセラミドの量それぞれをCer及びGlyCerとし、単位μgmLを解析した。2タンパク量の解析細胞中のセラミド量及びグルコシルセラミド量を表示するためにタンパク量の解析を行った。上記沈殿bに、900μlSDSドデシルスルホン酸ナトリウム溶液を入れ、混合し、60°Cで2時間加熱した後、タンパク質を変性降解させ、冷却した。次いで、100μl2NHClを加え、BCAKit法タンパク量の解析用のキットによりタンパク量Proと記する。μgmLを測定した。3解析の結果本発明品とコントロールの試料のそれぞれに対して、CerProとGlyCerProを測定した。前記コントロールのCerProとGlyCerProのそれぞれを1とした場合の、本発明のCerProとGlyCerProの相対値を算出して表2に示した。また、前記コントロールのwellあたりのタンパク量を100とした場合の、本発明のwellあたりのタンパク量の相対値Proを算出して、それによりwellあたりのセラミドの量及びグルコシルセラミド量コントロールに対する相対量を求めた。これらの結果を合わせて表2に示した。CerWellCerPro×ProGlyCerWellGlyCerPro×Proなお、CerPro又はCerWellが1コントロールよりも高い場合、当該試料がセラミド産生促進効果を有すると見なされる。また、GlyCerPro又はGlyCerWellが1コントロールよりも高い場合、当該試料がグルコシルセラミド産生促進効果を有すると見なされる。表2から明らかなように、実施例2-1の試料2-A1、2-A2、2-A3は、グルコシルセラミド産生促進効果を果たすことが確認された。実施例2-2実施例2-1に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Lactobacillus属の微生物として、Lactobacillusbrevis中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMB1199として受託されている。を使用した以外、実施例2-1と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、1mlの混合液を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2-B1とし、4°Cの冷蔵庫で保存して、細胞培養に供する。上記EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2-B2、2-B3とし、さらに、試料2-B2、2-B3をそれぞれ50vvEtOHで溶解し、1vv及び01vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例2-1と同様にして、試料2-B1、2-B2、2-B3のセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表2に示した。表2から明らかなように、実施例2-2の試料2-B1、2-B2、2-B3は、グルコシルセラミド産生促進効果を果たすことが確認された。実施例2-3実施例2-1に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Lactobacillus属の微生物として、Lactobacillusfarciminis中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMB1173として受託されている。を使用した以外、実施例2-1と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、1mlの混合液を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2-C1とし、4°Cの冷蔵庫で保存して、細胞培養に供する。上記EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2-C2、2-C3とし、さらに、試料2-C2、2-C3をそれぞれ50vvEtOHで溶解し、1vv及び01vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例2-1と同様にして、試料2-C1、2-C2、2-C3のセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表3に示した。表3から明らかなように、実施例2-3の試料2-C1、2-C2、2-C3は、セラミド産生促進効果を果たすことが確認された。実施例2-4実施例2-1に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Lactobacillus属の微生物として、Lactobacilluspentosus中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMB1174として受託されている。を使用した以外、実施例2-1と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、1mlの混合液を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2-D1とし、4°Cの冷蔵庫で保存して、細胞培養に供する。上記EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2-D2、2-D3とし、さらに、試料2-D2、2-D3をそれぞれ50vvEtOHで溶解し、1vv及び01vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例2-1と同様にして、試料2-D1、2-D2、2-D3のセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表4に示した。表4から明らかなように、実施例2-4の試料2-D1、2-D2、2-D3は、セラミド産生促進効果を果たすことが確認された。実施例2-5実施例2-1に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Lactobacillus属の微生物として、Lactobacillusplantarum中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMB1172として受託されている。を使用した以外、実施例2-1と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、1mlの混合液を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2-E1とし、4°Cの冷蔵庫で保存して、細胞培養に供する。上記EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2-E2、2-E3とし、さらに、試料2-E2、2-E3をそれぞれ50vvEtOHで溶解し、1vv及び01vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例2-1と同様にして、試料2-E1、2-E2、2-E3のセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表5に示した。表5から明らかなように、実施例2-5の試料2-E1、2-E2、2-E3は、グルコシルセラミド産生促進効果を果たすことが確認された。実施例2-6実施例2-1に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Lactobacillus属の微生物として、Lactobacillusplantarum中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMB1189として受託されている。を使用した以外、実施例2-1と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、当該EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2-F1、2-F2とし、さらに、試料2-F1、2-F2をそれぞれ50vvEtOHで溶解し、1vv及び01vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例2-1と同様にして、試料2-F1、2-F2のセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表5に示した。表5から明らかなように、実施例2-6の試料2-F1、2-F2は、セラミド及びグルコシルセラミド産生促進効果を果たすことが確認された。実施例2-7実施例2-1に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Lactobacillus属の微生物として、Lactobacillusplantarum中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMB1187として受託されている。を使用した以外、実施例2-1と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、当該EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2-G1とし、さらに、試料2-G1を50vvEtOHで溶解し、1vv及び01vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例2-1と同様にして、試料2-G1のセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表5に示した。表5から明らかなように、実施例2-7の試料2-G1は、セラミド及びグルコシルセラミド産生促進効果を果たすことが確認された。実施例2-8実施例2-1に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Lactobacillus属の微生物として、Lactobacillusplantarum中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMB1170として受託されている。を使用した以外、実施例2-1と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、1mlの混合液を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2-H1とし、4°Cの冷蔵庫で保存して、細胞培養に供する。上記EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2-H2、2-H3とし、さらに、試料2-H2、2-H3をそれぞれ50vvEtOHで溶解し、1vv及び01vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例2-1と同様にして、試料2-H1、2-H2、2-H3のセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表5に示した。表5から明らかなように、実施例2-8の試料2-H1、2-H2、2-H3は、セラミド及び又はグルコシルセラミド産生促進効果を果たすことが確認された。実施例2-9実施例2-1に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Lactobacillus属の微生物として、Lactobacillusplantarum中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMB1188として受託されている。を使用した以外、実施例2-1と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、1mlの混合液を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2-I1とし、4°Cの冷蔵庫で保存して、細胞培養に供する。上記EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2-I2とし、さらに、試料2-I2を50vvEtOHで溶解し、01vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例2-1と同様にして、試料2-I1、2-I2のセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表5に示した。表5から明らかなように、実施例2-9の試料2-I1、2-I2は、グルコシルセラミド産生促進効果を果たすことが確認された。実施例2-10実施例2-1に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Lactobacillus属の微生物として、Lactobacilluscoryniformis中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMB1243として受託されている。を使用した以外、実施例2-1と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、1mlの混合液を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2-J1とし、4°Cの冷蔵庫で保存して、細胞培養に供する。上記EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2-J2、2-J-3とし、さらに、試料2-I2、2-J-3をそれぞれ50vvEtOHで溶解し、1vv及び01vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例2-1と同様にして、試料2-J1、2-J2、2-J-3のセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表6に示した。表6から明らかなように、実施例2-10の試料2-J1、2-J2、2-J-3は、セラミド及び又はグルコシルセラミド産生促進効果を果たすことが確認された。実施例2-11実施例2-1に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Lactobacillus属の微生物として、Lactobacilluscoryniformis中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMB1190として受託されている。を使用した以外、実施例2-1と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、1mlの混合液を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2-K1とし、4°Cの冷蔵庫で保存して、細胞培養に供する。上記EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2-K2、2-K3とし、さらに、試料2-K2、2-K3ををそれぞれ50vvEtOHで溶解し、1vv及び01vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例2-1と同様にして、試料2-K1、2-K2、2-K3のセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表6に示した。表6から明らかなように、実施例2-11の試料2-K1は、グルコシルセラミド産生促進効果を果たすことが確認された。実施例2-12実施例2-1に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Lactobacillus属の微生物として、Lactobacilluscoryniformis中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMB1259として受託されている。を使用した以外、実施例2-1と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、1mlの混合液を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2-L1とし、4°Cの冷蔵庫で保存して、細胞培養に供する。上記EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2-L2、2-L3とし、さらに、試料2-L2、2-L3をそれぞれ50vvEtOHで溶解し、1vv及び01vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例2-1と同様にして、試料2-L1、2-L2、2-L3のセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表6に示した。表6から明らかなように、実施例612の試料6L2、6L3は、グルコシルセラミド産生促進効果を果たすことが確認された。実施例2-13実施例2-1に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Lactobacillus属の微生物として、Lactobacilluscurvatus中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMB1248として受託されている。を使用した以外、実施例2-1と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、1mlの混合液を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2-M1とし、4°Cの冷蔵庫で保存して、細胞培養に供する。上記EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2-M2、2-M-3とし、さらに、試料2-M2、2-M-3をそれぞれ50vvEtOHで溶解し、1vv及び01vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例2-1と同様にして、試料2-M1、2-M2、2-M-3のセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表7に示した。表7から明らかなように、実施例2-13の試料2-M1、2-M-3は、セラミド及び又はグルコシルセラミド産生促進効果を果たすことが確認された。実施例2-14実施例2-1に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Lactobacillus属の微生物として、Lactobacilluscurvatus中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMB1413として受託されている。を使用した以外、実施例2-1と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、1mlの混合液を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2-N1とし、4°Cの冷蔵庫で保存して、細胞培養に供する。上記EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2-N2、2-N-3とし、さらに、試料2-N2、2-N-3をそれぞれ50vvEtOHで溶解し、1vv及び01vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例2-1と同様にして、試料2-N1、2-N2、2-N-3のセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表7に示した。表7から明らかなように、実施例2-14の試料2-N2は、セラミド及びグルコシルセラミド産生促進効果を果たすことが確認された。実施例2-15実施例2-1に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Lactobacillus属の微生物として、Lactobacillusplantarum中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMB1430として受託されている。を使用した以外、実施例2-1と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、1mlの混合液を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2-O1とし、4°Cの冷蔵庫で保存して、細胞培養に供する。上記EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2-O2、2-O3とし、さらに、試料2-O2、2-O3をそれぞれ50vvEtOHで溶解し、1vv及び01vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例2-1と同様にして、試料2-O1、2-O2、2-O3のセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表8に示した。表8から明らかなように、実施例2-15の試料2-O1、2-O2、2-O3は、セラミド及び又はグルコシルセラミド産生促進効果を果たすことが確認された。実施例2-16実施例2-1に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Lactobacillus属の微生物として、Lactobacillusplantarum中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMB1441として受託されている。を使用した以外、実施例2-1と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、1mlの混合液を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2-P1とし、4°Cの冷蔵庫で保存して、細胞培養に供する。上記EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2-P2、2-P3とし、さらに、試料2-P2、2-P3をそれぞれ50vvEtOHで溶解し、1vv及び01vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例2-1と同様にして、試料2-P1、2-P2、2-P3のセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表8に示した。表8から明らかなように、実施例2-16の試料2-P1、2-P2、2-P3は、セラミド及び又はグルコシルセラミド産生促進効果を果たすことが確認された。実施例2-17実施例2-1に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Lactobacillus属の微生物として、Lactobacillusplantarum中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMB1191として受託されている。を使用した以外、実施例2-1と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、1mlの混合液を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2-Q1とし、4°Cの冷蔵庫で保存して、細胞培養に供する。上記EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2-Q2、2-Q3とし、さらに、試料2-Q2、2-Q3をそれぞれ50vvEtOHで溶解し、1vv及び01vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例2-1と同様にして、試料2-Q1、2-Q2、2-Q3のセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表8に示した。表8から明らかなように、実施例2-17の試料2-Q1、2-Q2、2-Q3は、セラミド及び又はグルコシルセラミド産生促進効果を果たすことが確認された。実施例2-18実施例2-1に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Lactobacillus属の微生物として、Lactobacillusplantarum中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMB1179として受託されている。を使用した以外、実施例2-1と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、1mlの混合液を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2-R1とし、4°Cの冷蔵庫で保存して、細胞培養に供する。上記EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2-R2、2-R3とし、さらに、試料2-R2、2-R3をそれぞれ50vvEtOHで溶解し、1vv及び01vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例2-1と同様にして、試料2-R1、2-R2、2-R3のセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表8に示した。表8から明らかなように、実施例2-18の試料2-R1、2-R2、2-R3は、グルコシルセラミド産生促進効果を果たすことが確認された。実施例2-19実施例2-1に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Lactobacillus属の微生物として、Lactobacillusplantarum中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMB1249として受託されている。を使用した以外、実施例2-1と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、当該EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2-S1、2-S2とし、さらに、試料2-S1、2-S2をそれぞれ50vvEtOHで溶解し、1vv及び01vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例2-1と同様にして、試料2-S1、2-S2のセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表8に示した。表8から明らかなように、実施例2-19の試料2-S1、2-S2は、グルコシルセラミド産生促進効果を果たすことが確認された。実施例2-20実施例2-1に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Lactobacillus属の微生物として、Lactobacillusplantarum中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMB1250として受託されている。を使用した以外、実施例2-1と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、1mlの混合液を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2-T1とし、4°Cの冷蔵庫で保存して、細胞培養に供する。上記EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2-T2とし、さらに、試料2-T2を50vvEtOHで溶解し、1vv濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例2-1と同様にして、試料2-T1、2-T2のセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表8に示した。表8から明らかなように、実施例2-20の試料2-T1、2-T2は、グルコシルセラミド産生促進効果を果たすことが確認された。実施例2-21実施例2-1に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Lactobacillus属の微生物として、Lactobacillusplantarum中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMB1255として受託されている。を使用した以外、実施例2-1と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、1mlの混合液を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2-U1とし、4°Cの冷蔵庫で保存して、細胞培養に供する。上記EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2-U2、2-U3とし、さらに、試料2-U2、2-U3をそれぞれ50vvEtOHで溶解し、1vv及び01vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例2-1と同様にして、試料2-U1、2-U2、2-U3のセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表8に示した。表8から明らかなように、実施例2-21の試料2-U1、2-U2、2-U3は、グルコシルセラミド産生促進効果を果たすことが確認された。実施例2-22実施例2-1に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Lactobacillus属の微生物として、Lactobacillusplantarum中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMB1433として受託されている。を使用した以外、実施例2-1と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、1mlの混合液を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2-V1とし、4°Cの冷蔵庫で保存して、細胞培養に供する。上記EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2-V2、2-V3とし、さらに、試料2-V2、2-V3をそれぞれ50vvEtOHで溶解し、1vv及び01vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例2-1と同様にして、試料2-V1、2-V2、2-V3のセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表8に示した。表8から明らかなように、実施例2-22の試料2-V1、2-V2、2-V3は、グルコシルセラミド産生促進効果を果たすことが確認された。実施例2-23実施例2-1に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Lactobacillus属の微生物として、Lactobacillusplantarum中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMB1432として受託されている。を使用した以外、実施例2-1と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、1mlの混合液を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2-W1とし、4°Cの冷蔵庫で保存して、細胞培養に供する。上記EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2-W2、2-W3とし、さらに、試料2-W2、2-W3をそれぞれ50vvEtOHで溶解し、1vv及び01vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例2-1と同様にして、試料2-W1、2-W2、2-W3のセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表8に示した。表8から明らかなように、実施例2-23の試料2-W1、2-W2、2-W3は、セラミド及びグルコシルセラミド産生促進効果を果たすことが確認された。実施例2-24実施例2-1に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Lactobacillus属の微生物として、Lactobacillusplantarum中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMB1442として受託されている。を使用した以外、実施例2-1と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、1mlの混合液を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2-X1とし、4°Cの冷蔵庫で保存して、細胞培養に供する。上記EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2-X2、2-X3とし、さらに、試料2-X2、2-X3をそれぞれ50vvEtOHで溶解し、1vv及び01vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例2-1と同様にして、試料2-X1、2-X2、2-X3のセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表8に示した。表8から明らかなように、実施例2-24の試料2-X1、2-X2、2-X3は、セラミド及びグルコシルセラミド産生促進効果を果たすことが確認された。実施例2-25実施例2-1に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Lactobacillus属の微生物として、Lactobacillusalimentarius中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMB1439として受託されている。を使用した以外、実施例2-1と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、当該EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2-Y1、2-Y2とし、さらに、試料2-Y1、2-Y2をそれぞれ50vvEtOHで溶解し、1vv及び01vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例2-1と同様にして、試料2-Y1、2-Y2のセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表9に示した。表9から明らかなように、実施例2-25の試料2-Y1、2-Y2は、セラミド及び又はグルコシルセラミド産生促進効果を果たすことが確認された。実施例2-26実施例2-1に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Lactobacillus属の微生物として、Lactobacillusalimentarius中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMB1440として受託されている。を使用した以外、実施例2-1と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、当該EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2-Z1とし、さらに、試料2-Z1を50vvEtOHで溶解し、1vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例2-1と同様にして、試料2-Z1のセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表9に示した。表9から明らかなように、実施例2-26の試料2-Z1は、セラミド産生促進効果を果たすことが確認された。実施例2-27実施例2-1に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Lactobacillus属の微生物として、Lactobacillusfarciminis中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMB1443として受託されている。を使用した以外、実施例2-1と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、当該EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2-a1とし、さらに、試料2-a1を50vvEtOHで溶解し、01vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例2-1と同様にして、試料2-a1のセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表9に示した。表9から明らかなように、実施例2-27の試料2-a1は、セラミド産生促進効果を果たすことが確認された。なお、上記試料のそれぞれについて、それを上記ヒトの活性化角化細胞を含む12wellPlateに加えることを行わない即ち、上記細胞培養を行わないままで、セラミド量及びグルコシルセラミド量の解析を行った。上記以外は、上記実施例2-1と同様にした。その結果は、上記試料のそれぞれの何れかの自身にもセラミド又はグルコシルセラミドが存在しないことが確認された。これから、本発明の製品自身には、セラミド又はグルコシルセラミドが存在しないが、本発明の製品が、セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進の効果を有し、セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤として用いることが分かる。実施例3-1<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>まず、以下の方法で培地を調製した。大豆を水に入れ、12時間含浸し、大豆に水を十分に吸収させた。水を吸収した大豆を研削して粉砕し、濾過、滴り乾燥し、大豆残渣を得た。当該大豆残渣を、大豆残渣の濃度が10wv、ブドウ糖の濃度が1wvになるように、ブドウ糖及び水と混合して、培地とした。次いで、上記培地100mlを三角フラスコに入れ、Acetobacteraceti中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMB0137として受託されている。を規定の量で接種し、30°Cで3日間培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、1mlの混合液を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料3-Aとし、4°Cの冷蔵庫で保存して、細胞培養に供する。上記EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料3-B、3-Cとし、さらに、試料3-B、3-Cをそれぞれ50vvEtOHで溶解し、1vv及び01vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の評価>細胞培養まず、正常ヒトの活性化角化細胞CascadeCoLtdを初代細胞として、75cm2の培養フラスコ増殖因子を含有する培地2mlに、7°C、5CO2のインキュベーターにて80~90コンフルエントの状態に達するまで培養した。継代細胞を175cm2の培養フラスコに80~90コンフルエントの状態に達するまでに持続培養した。継代培養した後のヒト表皮角化細胞を12wellPlate細胞数1×105個mLに2mLずつ播種し、37°C、5CO2のインキュベーターにて80~90コンフルエントの状態に達するまで持続培養した。次いで、上記12wellPlateにおいて増殖因子を含有しない培地を変更し、本発明の製品試料3-A、3-B、3-C及びコントロール50vvのエタノール溶液を当該12wellPlaten2に添加した。同じ条件で3日間培養した。その後、上清の培養液を除去し、PBS2mLWellにて細胞を2回洗浄した後、1mLPBSを入れ、各々の細胞をセルハーベスターで試験管に回収した。それを、後のセラミド、グルコシルセラミド及び蛋白質の量を解析するための試料とした。セラミドグルコシルセラミド産生促進効果の確認前記回収された細胞を含むPBS液に、まず、メタノール:クロロホルム2.5ml:1.25ml加え攪拌し、次に、20分間振とうした。その後、遠心分離3000rpm、5分を行い、上清aと沈殿bを取り分けて、その上清aをセラミドグルコシルセラミド量の解析に供し、沈殿bを次のタンパク量解析に供した。1セラミドグルコシルセラミド量の解析上清aにPBS:クロロホルム1.25ml:1.25mlを入れ、20分間振動し、遠心分離3000rpm、5分を行い、下相にあるクロロホルム層を単離、回収した。回収されたクロロホルム層を30°C、窒素雰囲気で乾固させた。乾燥品をクロロホルム-メタノール混合溶媒容量比=25ml:125ml100μlに溶解し、下記の薄層クロマトグラフィーによりセラミド量及びグルコシルセラミド量の定量に供した。セラミド又はグルコシルセラミド標準品と試料溶液とを乾燥のTLC板に入れ、展開溶媒であるクロロホルム:メタノール:酢酸=190:9:1vvvで薄層クロマトグラフィーを行った。展開剤がTCL板のトップに到達した後、ドライヤーで展開剤を乾燥した。次いで上記操作を1回繰り返した。その後、展開溶媒であるクロロホルム:メタノール:アセトン=76:20:4vvvで薄層クロマトグラフィーを行った。展開剤がTCL板のボタムからの2.5cmの位置に到達した後、展開を停止し、ドライヤーで展開剤を乾燥した。硫酸銅のリン酸溶液を吹き、乾燥して、TCL板を180°Cのヒータに置き7分間加熱して顕色させた。顕色されたTLC板をスキャンしてセラミド又はグルコシルセラミドの量それぞれをCer及びGlyCerとし、単位μgmLを解析した。2タンパク量の解析細胞中のセラミド量及びグルコシルセラミド量を表示するためにタンパク量の解析を行った。上記沈殿bに、900μlSDSドデシルスルホン酸ナトリウム溶液を入れ、混合し、60°Cで2時間加熱した後、タンパク質を変性降解させ、冷却した。次いで、100μl2NHClを加え、BCAKit法タンパク量の解析用のキットによりタンパク量Proと記する。μgmLを測定した。3解析の結果本発明品とコントロールの試料のそれぞれに対して、下式のように、CerProとGlyCerProを測定した。前記コントロールのCerProとGlyCerProのそれぞれを1とした場合の、本発明のCerProとGlyCerProの相対値を算出して表10に示した。また、前記コントロールのwellあたりのタンパク量を100とした場合の、本発明のwellあたりのタンパク量の相対値Proを算出して、それによりwellあたりのセラミドの量及びグルコシルセラミド量コントロールに対する相対量を求めた。合わせて表10に示した。CerWellCerPro×ProGlyCerWellGlyCerPro×Proなお、CerPro又はCerWellが1コントロールよりも高い場合、当該試料がセラミド産生促進効果を有すると見なされる。また、GlyCerPro又はGlyCerWellが1コントロールよりも高い場合、当該試料がグルコシルセラミド産生促進効果を有すると見なされる。表10から明らかなように、実施例3-1の試料3-A、3-B、3-Cは、グルコシルセラミド産生促進効果が認められた。実施例3-2実施例3-1に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Acetobacter属の微生物として、Acetobacteraceti中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMB0142として受託されている。を使用した以外、実施例3-1と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、1mlの混合液を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料3-Dとし、4°Cの冷蔵庫で保存して、細胞培養に供する。上記EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料3-E、3-Fとし、さらに、試料3-E、3-Fをそれぞれ50vvEtOHで溶解し、1vv及び01vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例3-1と同様にして、試料3-D、3-E、3-Fのセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表10に示した。表10から明らかなように、実施例3-2の試料3-D、3-E、3-Fは、セラミド及びグルコシルセラミド産生促進効果が認められた。実施例3-3実施例3-1に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Acetobacter属の微生物として、Acetobacteraceti中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMB0145として受託されている。を使用した以外、実施例3-1と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、1mlの混合液を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料3-Gとし、4°Cの冷蔵庫で保存して、細胞培養に供する。上記EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料3-H、3-Iとし、さらに、試料3-H、3-Iをそれぞれ50vvEtOHで溶解し、1vv及び01vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例3-1と同様にして、試料3-G、3-H、3-Iのセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表10に示した。表10から明らかなように、実施例3-3の試料3-G、3-H、3-Iは、セラミド産生促進効果が認められた。実施例3-4実施例3-1に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Acetobacter属の微生物として、Acetobacteraceti中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMB0133として受託されている。を使用した以外、実施例3-1と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、1mlの混合液を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料3-Jとし、4°Cの冷蔵庫で保存して、細胞培養に供する。上記EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料3-K、3-Lとし、さらに、試料3-K、3-Lをそれぞれ50vvEtOHで溶解し、1vv及び01vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例3-1と同様にして、試料3-J、3-K、3-Lのセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表10に示した。表10から明らかなように、実施例3-4の試料3-J、3-K、3-Lは、セラミド産生促進効果が認められた。実施例3-5実施例3-1に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Acetobacter属の微生物として、Acetobacteraceti中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMB0128として受託されている。を使用した以外、実施例3-1と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、1mlの混合液を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料3-Mとし、4°Cの冷蔵庫で保存して、細胞培養に供する。上記EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料3-N、3-Oとし、さらに、試料3-N、3-Oをそれぞれ50vvEtOHで溶解し、1vv及び01vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例3-1と同様にして、試料3-M、3-N、3-Oのセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表10に示した。表10から明らかなように、実施例3-5の試料3-M、3-N、3-Oは、セラミド産生促進効果が認められた。実施例3-6実施例3-1に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Acetobacter属の微生物として、Acetobacteraceti中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMB0130として受託されている。を使用した以外、実施例3-1と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、1mlの混合液を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料3-Pとし、4°Cの冷蔵庫で保存して、細胞培養に供する。上記EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料3-Q、3-Rとし、さらに、試料3-Q、3-Rをそれぞれ50vvEtOHで溶解し、1vv及び01vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例3-1と同様にして、試料3-P、3-Q、3-Rのセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表10に示した。表10から明らかなように、実施例3-6の試料3-P、3-Q、3-Rは、セラミド産生促進効果が認められた。実施例3-7実施例3-1に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Acetobacter属の微生物として、Acetobacteraceti中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMB0120として受託されている。を使用した以外、実施例3-1と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、1mlの混合液を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料3-Sとし、4°Cの冷蔵庫で保存して、細胞培養に供する。上記EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料3-T、3-Uとし、さらに、試料3-T、3-Uをそれぞれ50vvEtOHで溶解し、1vv及び01vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例3-1と同様にして、試料3-S、3-T、3-Uのセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表10に示した。表10から明らかなように、実施例3-7の試料3-S、3-Tは、グルコシルセラミド産生促進効果が認められた。なお、試料3-A~3-Uについて、それらを上記ヒトの活性化角化細胞を含む12wellPlateに加えることを行わない即ち、上記細胞培養を行わないままで、セラミド量及びグルコシルセラミド量の解析を行った。上記以外は、上記実施例3-1と同様にした。その結果は、試料3-A~3-Uの何れかの自身にもセラミド又はグルコシルセラミドが存在しないことが確認された。これから、本発明の製品自身には、セラミド又はグルコシルセラミドが存在しないが、本発明の製品が、セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進の効果を有し、セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤として用いることが分かる。実施例4-1<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>まず、以下の方法で培地を調製した。大豆を水に入れ、12時間含浸し、大豆に水を十分に吸収させた。水を吸収した大豆を研削して粉砕し、濾過、滴り乾燥し、大豆残渣を得た。当該大豆残渣を、大豆残渣の濃度が10wv、ブドウ糖の濃度が1wvになるように、ブドウ糖及び水と混合して、培地とした。次いで、上記培地100mlを三角フラスコに入れ、Leuconostocmesenteroides中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMB1254として受託されている。を規定の量で接種し、30°Cで3日間培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、1mlの混合液を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料4-Aとし、4°Cの冷蔵庫で保存して、細胞培養に供する。上記EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料4-B、4-Cとし、さらに、試料4-B、4-Cをそれぞれ50vvEtOHで溶解し、1vv及び01vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の評価>細胞培養まず、正常ヒトの活性化角化細胞CascadeCoLtdを初代細胞として、75cm2の培養フラスコ増殖因子を含有する培地2mlに、7°C、5CO2のインキュベーターにて80~90コンフルエントの状態に達するまで培養した。継代細胞を175cm2の培養フラスコに80~90コンフルエントの状態に達するまでに持続培養した。継代培養した後のヒト表皮角化細胞を12wellPlate細胞数1×105個mLに2mLずつ播種し、37°C、5CO2のインキュベーターにて80~90コンフルエントの状態に達するまで持続培養した。次いで、上記12wellPlateにおいて増殖因子を含有しない培地を変更し、本発明の製品試料4-A、4-B、4-C及びコントロール50vvのエタノール溶液を当該12wellPlaten2に添加した。同じ条件で3日間培養した。その後、上清の培養液を除去し、PBS2mLWellにて細胞を2回洗浄した後、1mLPBSを入れ、各々の細胞をセルハーベスターで試験管に回収した。それを、後のセラミド及び蛋白質の解析する用の試料とした。セラミド産生促進効果の確認前記回収された細胞を含むPBS液に、まず、メタノール:クロロホルム2.5ml:1.25ml加え攪拌し、次に、20分間振とうした。その後、遠心分離3000rpm、5分を行い、上清aと沈殿bを取り分けて、その上清aをセラミド量の解析に供し、沈殿bを次のタンパク量解析に供した。1セラミド量の解析上清aにPBS:クロロホルム1.25ml:1.25mlを入れ、20分間振動し、遠心分離3000rpm、5分を行い、下相にあるクロロホルム層を単離、回収した。回収されたクロロホルム層を30°C、窒素雰囲気で乾固させた。乾燥品をクロロホルム-メタノール混合溶媒容量比=25ml:125ml100μlに溶解し、下記の薄層クロマトグラフィーによりセラミド量の定量に供した。セラミド標準品と試料溶液とを乾燥のTLC板に入れ、展開溶媒であるクロロホルム:メタノール:酢酸=190:9:1vvvで薄層クロマトグラフィーを行った。展開剤がTCL板のトップに到達した後、ドライヤーで展開剤を乾燥した。次いで上記操作を1回繰り返した。その後、展開溶媒であるクロロホルム:メタノール:アセトン=76:20:4vvvで薄層クロマトグラフィーを行った。展開剤がTCL板のボタムからの2.5cmの位置に到達した後、展開を停止し、ドライヤーで展開剤を乾燥した。硫酸銅のリン酸溶液を吹き、乾燥して、TCL板を180°Cのヒータに置き7分間加熱して顕色させた。顕色されたTLC板をスキャンしてセラミドの量Cerとし、単位μgmLを解析した。2タンパク量の解析細胞中のセラミド量及びグルコシルセラミド量を表示するためにタンパク量の解析を行った。上記沈殿bに、900μlSDSドデシルスルホン酸ナトリウム溶液を入れ、混合し、60°Cで2時間加熱した後、タンパク質を変性降解させ、冷却した。次いで、100μl2NHClを加え、BCAKit法タンパク量の解析用のキットによりタンパク量Proと記する。μgmLを測定した。3解析の結果本発明品とコントロールの試料のそれぞれに対して、下式のように、CerProを測定した。前記コントロールのCerProを1とした場合の、本発明のCerProの相対値を算出して表11に示した。また、前記コントロールのwellあたりのタンパク量を100とした場合の、本発明のwellあたりのタンパク量の相対値Proを算出して、それによりwellあたりのセラミドの量コントロールに対する相対量を求めた。合わせて表11に示した。CerWellCerPro×Proなお、CerPro又はCerWellが1コントロールよりも高い場合、当該試料がセラミド産生促進効果を有すると見なされる。表11から明らかなように、実施例4-1の試料4-A、4-B、4-Cは、セラミド産生促進効果が認められた。実施例4-2実施例4-1に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Leuconostoc属の微生物として、Leuconostocmesenteroides中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMB1364として受託されている。を使用した以外、実施例4-1と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、1mlの混合液を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料4-Dとし、4°Cの冷蔵庫で保存して、細胞培養に供する。上記EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料4-E、4-Fとし、さらに、試料4-E、4-Fをそれぞれ50vvEtOHで溶解し、1vv及び01vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例4-1と同様にして、試料4-D、4-E、4-Fのセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表11に示した。表11から明らかなように、実施例4-2の試料4-D、4-E、4-Fは、セラミド産生促進効果が認められた。なお、試料4-A~4-Fについて、それらを上記ヒトの活性化角化細胞を含む12wellPlateに加えることを行わない即ち、上記細胞培養を行わないままで、セラミド量及びグルコシルセラミド量の解析を行った。上記以外は、上記実施例4-1と同様にした。その結果は、試料4-A~4-Fの何れかの自身にもセラミド又はグルコシルセラミドが存在しないことが確認された。これから、本発明の製品自身には、セラミド又はグルコシルセラミドが存在しないが、本発明の製品が、セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進の効果を有し、セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤として用いることが分かる。