"配列番号1又は配列番号2で表される塩基配列に基づいて設計され、且つクラミジアトラコマティスChlamydiatrachomatisの内在性プラスミド遺伝子とハイブリダイズするオリゴヌクレオチド。配列番号1又は配列番号2で表される塩基配列に基づいて設計され、且つクラミジアトラコマティスの内在性プラスミド遺伝子とハイブリダイズするオリゴヌクレオチドの、クラミジアトラコマティス検出用プライマー又はプローブ設計への使用。配列番号1又は配列番号2で表される塩基配列に基づいて設計され、且つクラミジアトラコマティスの内在性プラスミド遺伝子とハイブリダイズするオリゴヌクレオチドプライマー。配列番号1又は配列番号2で表される塩基配列に基づいて設計されたオリゴヌクレオチドプライマーが、配列番号3~配列番号7のいずれかで表される塩基配列、又は配列番号3~配列番号7のいずれかで表される塩基配列に対する相補配列からなるものである、請求項3に記載のオリゴヌクレオチドプライマー。配列番号1又は配列番号2で表される塩基配列に基づいて設計されたオリゴヌクレオチドプライマーが、配列番号3~配列番号7のいずれかで表される塩基配列又は配列番号3~配列番号7のいずれかで表される塩基配列に対する相補配列からなるオリゴヌクレオチドから選択されるフォワードプライマーとリバースプライマーの組合せからなる、請求項3に記載のオリゴヌクレオチドプライマー。配列番号1又は配列番号2で表される塩基配列に基づいて設計され、且つクラミジアトラコマティスの内在性プラスミド遺伝子とハイブリダイズするオリゴヌクレオチドプローブ。配列番号1又は配列番号2で表される塩基配列に基づいて設計されたオリゴヌクレオチドプローブが、配列番号1~配列番号9のいずれかで表される塩基配列、又は配列番号1~配列番号9のいずれかで表される塩基配列に対する相補配列からなるものである、請求項6に記載のオリゴヌクレオチドプローブ。配列番号1又は配列番号2で表される塩基配列に基づいて設計されたオリゴヌクレオチドプローブが、配列番号8若しくは配列番号9のいずれかで表される塩基配列、又は配列番号8若しくは配列番号9のいずれかで表される塩基配列に対する相補配列からなるものである、請求項6に記載のオリゴヌクレオチドプローブ。標識物質で標識された、請求項6に記載のプローブ。標識物質が放射性同位体、酵素、蛍光物質、発光物質又はビオチンから選択されるものである、請求項9に記載のプローブ。レポーター蛍光色素とクエンチャー色素で標識された、請求項9に記載のプローブ。配列番号1又は配列番号2で表される塩基配列に基づいて設計され、且つクラミジアトラコマティスの内在性プラスミド遺伝子とハイブリダイズするオリゴヌクレオチドをプライマーとして用い、試料中の核酸を鋳型として核酸増幅反応を行い、当該反応の結果生じるものを検出することを特徴とする、クラミジアトラコマティスの検出方法。配列番号1又は配列番号2で表される塩基配列に基づいて設計されたオリゴヌクレオチドプライマーが、配列番号3~配列番号7のいずれかで表される塩基配列、又は配列番号3~配列番号7のいずれかで表される塩基配列に対する相補配列からなるものである、請求項12に記載の検出方法。核酸増幅反応を、下記のいずれかのプライマー対を用いて行う、請求項12に記載の検出方法1配列番号3で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドプライマーと、配列番号4で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドプライマー、2配列番号5で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドプライマーと、配列番号6で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドプライマー、3配列番号7で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドプライマーと、配列番号6で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドプライマー。核酸増幅反応がリアルタイムPCRである、請求項12に記載の検出方法当該反応の結果生じるものがプライマー伸長産物であり、これをインターカレーターを用いて検出する、請求項12に記載の検出方法。更に、配列番号1又は配列番号2で表される塩基配列に基づいて設計され、且つクラミジアトラコマティスの内在性プラスミド遺伝子とハイブリダイズするオリゴヌクレオチドをレポーター色素及びクエンチャー蛍光色素で標識した標識プローブを用いる、請求項12に記載の検出方法下記のいずれかにより行う、請求項12に記載の検出方法1配列番号3で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドプライマーと、配列番号4で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドプライマーと、配列番号8で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドをレポーター色素とクエンチャー色素で標識した標識プローブを用いて、試料中の核酸を鋳型として核酸増幅反応を行い、該標識プローブから遊離した標識物質を検出する、2配列番号5で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドプライマーと、配列番号6で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドプライマーと、配列番号9で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドをレポーター色素とクエンチャー色素で標識した標識プローブを用いて、試料中の核酸を鋳型として核酸増幅反応を行い、該標識プローブから遊離した標識物質を検出する、3配列番号7で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドプライマーと、配列番号6で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドプライマーと、配列番号9で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドをレポーター色素とクエンチャー色素で標識した標識プローブを用いて、試料中の核酸を鋳型として核酸増幅反応を行い、該標識プローブから遊離した標識物質を検出する。核酸増幅反応を行った後、得られたプライマー伸長産物について電気泳動を行い、その結果に基づいてクラミドフィラキャビエの有無を判定する、請求項12に記載の検出方法。配列番号1又は配列番号2で表される塩基配列に基づいて設計され、且つクラミジアトラコマティスの内在性プラスミド遺伝子とハイブリダイズするオリゴヌクレオチドをプライマー又は/及びプローブとして含んでなる、クラミジアトラコマティス検出用試薬キット。配列番号1又は配列番号2で表される塩基配列に基づいて設計されたオリゴヌクレオチドプライマー又は/及びプローブが、配列番号1~配列番号9のいずれかで表される塩基配列、又は配列番号1~配列番号9のいずれかで表される塩基配列に対する相補配列からなるものである、請求項20に記載のキット。プローブが標識物質で標識化されたものである、請求項20に記載のキット。プローブが、レポーター色素及びクエンチャー蛍光色素で標識化されたものである、請求項20に記載のキット。プライマーとして下記から選択されるプライマー対を含有する、請求項20に記載のキット。1配列番号3で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドプライマーと、配列番号4で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドプライマー、2配列番号5で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドプライマーと、配列番号6で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドプライマー、3配列番号7で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドプライマーと、配列番号6で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドプライマー。下記から選択されるプライマー対及びプローブの組合せを含有する、請求項20に記載のキット1配列番号3で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドプライマー、配列番号4で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドプライマー、及び配列番号8で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドを標識物質で標識した標識プローブ、2配列番号5で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドプライマー、配列番号6で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドプライマー、及び配列番号9で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドを標識物質で標識した標識プローブ、3配列番号7で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドプライマー、配列番号6で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチドプライマー、及び配列番号9で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドを標識物質で標識した標識プローブ。本発明は、上記した如き状況に鑑みなされたもので、偽陰性の判定が生じることのない、感度および特異性に優れかつ迅速なクラミジアトラコマティスの検出方法およびそれに使用するプライマー及びプローブを提供することを課題とする。本発明は上記課題を解決する目的で成されたもので、以下の構成よりなる。1配列番号1又は配列番号2で表される塩基配列に基づいて設計され、且つクラミジアトラコマティスの内在性プラスミド遺伝子とハイブリダイズするオリゴヌクレオチド。2配列番号1又は配列番号2で表される塩基配列に基づいて設計され、且つクラミジアトラコマティスの内在性プラスミド遺伝子とハイブリダイズするオリゴヌクレオチドプライマー。3配列番号1又は配列番号2で表される塩基配列に基づいて設計され、且つクラミジアトラコマティスの内在性プラスミド遺伝子とハイブリダイズするオリゴヌクレオチドプローブ。4配列番号10で表されるクラミジアトラコマティスの内在性プラスミド遺伝子中の、配列番号1で表される塩基配列を持つ塩基番号4133~塩基番号4277の領域若しくは配列番号2で表される塩基配列を持つ塩基番号32~塩基番号176の領域、又はこれらの領域内の更に特定の領域を標的とし、試料中にこれらの領域の塩基配列を持つオリゴヌクレオチドが存在するか否かを確認するために、配列番号1又は配列番号2で表される塩基配列に基づいて設計され、且つクラミジアトラコマティスの内在性プラスミド遺伝子とハイブリダイズするオリゴヌクレオチドをプライマーとして用い、試料中の核酸を鋳型として核酸増幅反応を行い、当該反応の結果生じるものを検出することを特徴とする、クラミジアトラコマティスの検出方法。5配列番号1又は配列番号2で表される塩基配列に基づいて設計され、且つクラミジアトラコマティスの内在性プラスミド遺伝子とハイブリダイズするオリゴヌクレオチドをプライマー又は/及びプローブとして含んでなる、クラミジアトラコマティス検出用試薬キット。本発明者等は、現在までに決定されたクラミジアトラコマティスとその他の生物の各種遺伝子について、各種間の各遺伝子配列の相同性の理論的検証と実験的検証を重ねた。その結果、クラミジアトラコマティスの検出に最適な核酸配列を得、そして更にこれらの配列をもとにクラミジアトラコマティス検出用プライマー及びプローブを開発し、これらを用いたクラミジアトラコマティスの検出方法を確立し、本発明を完成させるに至った。本発明により、感度および特異性に優れかつ迅速なクラミジアトラコマティスの検出方法が提供される。また、本発明が提供する検出用プライマーを用いた検出方法により、従来法では発生する虞のあった偽陰性を回避して、クラミジアトラコマティスの検出を精度良く行うことが出来る。本発明者等は、クラミジアトラコマティスChlamydiatrachomatisの内在性プラスミドとして、pLGV440と呼ばれるプラスミドに着目した。クラミジアトラコマティスの内在性プラスミドcrypticplasmidpLGV440遺伝子の全塩基配列は、非特許文献7のFigure2に記載されており、7498塩基の大きさで、本明細書では配列番号10で表される塩基配列である。本発明において、クラミジアトラコマティスの内在性プラスミド遺伝子と記載した場合、上記したクラミジアトラコマティスの内在性プラスミドpLGV440遺伝子の全塩基配列を指す場合と、該全塩基配列のうちの任意の塩基配列単位領域を指す場合がある。尚、クラミジアトラコマティスの内在性プラスミドを、以下単に内在性プラスミドという場合がある。本発明者等は、内在性プラスミドpLGV440遺伝子から、特に2箇所の領域に注目した。すなわち、配列番号10で表されるクラミジアトラコマティスの内在性プラスミドpLGV440遺伝子の、塩基番号4133~塩基番号4277の領域配列番号1で表される塩基配列からなると、塩基番号32~塩基番号176の領域配列番号2で表される塩基配列からなるである。本発明者等は、配列番号1で表される塩基配列をTcTIFw01Rv01と命名し、配列番号2で表される塩基配列をTcTIFw02Rv02と命名した。そして、この2箇所の領域の塩基配列を元に、クラミジアトラコマティスの検出に利用できる本発明のオリゴヌクレオチドを設計した。すなわち、本発明のオリゴヌクレオチドは、配列番号1又は配列番号2で表される塩基配列に基づいて設計され、且つクラミジアトラコマティスの内在性プラスミド遺伝子とハイブリダイズするオリゴヌクレオチド。以下、本発明のオリゴヌクレオチドと略記する場合がある。である。本発明に係る配列番号1又は配列番号2で表される塩基配列に基づいて設計されたオリゴヌクレオチドの具体例としては、配列表の、配列番号1~9のいずれかで表される塩基配列、又は配列番号1~9のいずれかで表される塩基配列に対する相補配列からなるオリゴヌクレオチドが挙げられる。本発明に係る配列番号1~9のいずれかで表される塩基配列に対する相補配列としては、例えば本発明の配列番号1~9のいずれかで表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチドと、ストリンジェントな条件又はハイストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列からなるオリゴヌクレオチドが挙げられる。ここでいう、ストリンジェントな条件とは、具体的には例えば6×SSC又はこれと同等の塩濃度のハイブリダイゼーション溶液中、50~70°Cの温度の条件下で16時間ハイブリダイゼーションを行い、6×SSC又はこれと同等の塩濃度の溶液等で必要に応じて予備洗浄を行った後、1×SSC又はこれと同等の塩濃度の溶液等で洗浄する。という条件である。また、ここでいうハイストリンジェントな条件とは、具体的には例えば50ホルムアミド中で42~70°Cで、好ましくは60~70°Cでハイブリダイゼーションを行い、その後02~2×SSC、01ドデシル硫酸ナトリウムSDS中、25~70°Cで洗浄する。という条件である。例えば、ポリメラーゼ連鎖反応PolymerasechainreactionPCR等の核酸増幅反応を用いたクラミジアトラコマティスの検出方法では、クラミジアトラコマティスの遺伝子の特定領域の塩基配列を標的として設定し、その塩基配列を増幅するようなプライマーセットを用い、試料中の核酸を鋳型として用いてPCRを行う。そして目的のプライマー伸長産物が得られた場合、試料中には標的の塩基配列を持つ核酸が存在する、すなわち、クラミジアトラコマティスが、又はその遺伝子が存在すると判定できる。本発明に係る配列番号1若しくは配列番号2で表される塩基配列、又は配列番号1若しくは配列番号2で表される塩基配列に対する相補配列は、上記したクラミジアトラコマティスの検出の際の標的と成りうるものである。具体的に説明すると、配列番号1若しくは配列番号2で表される塩基配列、又は配列番号1若しくは配列番号2で表される塩基配列に対する相補配列を標的にしてPCRを行う。そして、プライマー伸長産物が得られれば、配列番号1若しくは配列番号2で表される塩基配列、又は配列番号1若しくは配列番号2で表される塩基配列に対する相補配列を持つ核酸が試料中に存在する、すなわち試料中にはクラミジアトラコマティス又はその遺伝子が存在すると判定できる。尚、配列番号1若しくは配列番号2で表される塩基配列、又は配列番号1若しくは配列番号2で表される塩基配列に対する相補配列中の、更に特定の領域の配列を標的として設定してもよい。すなわち、例えば配列番号1で表される塩基配列中の、更に特定の領域の配列を標的として設定し、この配列を増幅させるプライマーセットを設計する。そして該プライマーセットを用いたPCRでプライマー伸長産物が得られた場合、試料中には標的の塩基配列を持つ核酸が存在する、すなわち、クラミジアトラコマティスが、又はその遺伝子が存在すると判定できるのである。また、本発明のオリゴヌクレオチドは、クラミジアトラコマティス検出用プライマー又はプローブ設計のために使用することも出来る。すなわち、本発明の配列番号1若しくは配列番号1で表される塩基配列、又は配列番号2若しくは配列番号2で表される塩基配列に対する相補配列に基づいて、後述する常法に従ってプライマー又はプローブを設計すればよい。本発明に係るクラミジアトラコマティスの内在性プラスミド遺伝子とハイブリダイズするオリゴヌクレオチドとは、クラミジアトラコマティスの内在性プラスミド遺伝子とハイストリンジェントな条件又はストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列からなるオリゴヌクレオチド等が挙げられる。そのハイストリンジェントな条件及びストリンジェントな条件は、上記したとおりである。尚、配列番号3、配列番号4及び配列番号8で表される塩基配列は、配列番号1で表される塩基配列に基づいて設計されたものである。配列番号5~配列番号7、及び配列番号9で表される塩基配列は、配列番号2で表される塩基配列に基づいて設計されたものである。本発明のオリゴヌクレオチドはデオキシリボ核酸DNAでもリボ核酸RNAでもよい。リボ核酸の場合はチミジン残基Tをウリジン残基Uと読み替えることは言うまでもない。また合成に際して任意の位置のTをUに変えて合成を行なって得られた、ウリジン残基を含むDNAであってもよい。同様に任意の位置のUをTに変えたチミジン残基を含むRNAであってもよい。また、一つ若しくは複数のヌクレオチドが欠失、挿入又は置換されたオリゴヌクレオチドであってもよい。一つ若しくは複数のヌクレオチドがイノシンIのような修飾ヌクレオチドであってもよい。本発明のオリゴヌクレオチドを得る方法としては、特に限定されないが、例えば自体公知の化学合成法により調製する方法、ベクター等を用いる遺伝子操作法によりオリゴヌクレオチド又はポリヌクレオチドを得る方法クローン化法等が挙げられる。本発明のオリゴヌクレオチドのうち、15~30塩基程度のオリゴヌクレオチドを得る場合には、容易大量且つ安価に一定品質のオリゴヌクレオチドを得ることが可能なことから、化学合成法が、通常利用される。例えば、DNAの合成に通常行われている、DNAシンセサイザーを用い、通常のホスホアミダイト法にてオリゴヌクレオチドを合成し、陰イオン交換カラムクロマトグラフィーを用いる常法により精製すれば、目的とする本発明のオリゴヌクレオチドを得ることができる。また、オリゴヌクレオチドの合成を行う委託業者から購入してもよい。本発明のプライマーは、クラミジアトラコマティス検出用として用いられるもので、配列番号1又は配列番号2で表される塩基配列に基づいて設計され、且つクラミジアトラコマティスの内在性プラスミド遺伝子とハイブリダイズするオリゴヌクレオチドプライマー。以下、本発明のプライマーと記載する場合がある。である。すなわち、本発明のプライマーは、配列番号10で表されるクラミジアトラコマティスの内在性プラスミドpLGV440遺伝子の、塩基番号4133~塩基番号4277の領域配列番号1で表される塩基配列から成る又は塩基番号32~塩基番号176配列番号2で表される塩基配列から成るの領域の塩基配列に基づいて設計されるものである。そして、これらのプライマーを用いた核酸増幅反応で、上記領域、又はこれらの領域内のさらに特定の領域を増幅させることができる。更に本発明のプライマーは、上記した領域の塩基配列の相補配列を増幅させるのに用いることができる。配列番号1又は配列番号2で表される塩基配列に基づいてプライマーを設計する方法としては、例えば以下の方法が挙げられる。すなわち、当該プライマーを使用する反応の種類[PCRリアルタイムPCRを含む等の核酸増幅反応、核酸ハイブリダイゼーションなど]や反応条件[例えば解離温度Tm値など]を考慮して、配列番号1若しくは配列番号2で表される塩基配列、又は配列番号1若しくは配列番号2で表される塩基配列に対する相補配列の中から、適当な領域の適当な長さを選択することにより、プライマーを設計すればよい。また、プライマー設計のために一般に用いられているソフトや、例えばプライマーデザイン用のWebツールPrimer3等を用いてプライマーを設計してもよい。また、本発明のプライマーは、好ましくはプライマー配列としての特異性を維持するために必要な塩基数と考えられている10~50塩基、より好ましくは10~35塩基、更に好ましくは18~25塩基の長さを有しているオリゴヌクレオチドである。本発明のプライマーに用いられる、配列番号1又は配列番号2で表される塩基配列に基づいて設計され、且つクラミジアトラコマティスの内在性プラスミド遺伝子とハイブリダイズするオリゴヌクレオチド本発明のオリゴヌクレオチドの具体例は、上記の本発明のオリゴヌクレオチドに関する記載で説明した通りである。また、本発明のプライマーに使用するオリゴヌクレオチドは、使用する条件、目的などに応じて、オリゴヌクレオチド中に一つ又は複数のヌクレオチドの欠失、挿入又は置換が存在していてもよい。本発明のプライマーの具体例としては、配列番号3~配列番号7のいずれかで表される塩基配列、又は配列番号3~配列番号7のいずれかで表される塩基配列に対する相補配列からなるオリゴヌクレオチドプライマーが挙げられる。また、本発明のプライマーには、配列番号3~配列番号7のいずれかで表される塩基配列又は配列番号3~配列番号7のいずれかで表される塩基配列に対する相補配列からなるオリゴヌクレオチドから選択されるフォワードプライマーとリバースプライマーの組合せも含まれる。尚、本発明の好ましいプライマーと、本発明で命名したその名称を、下記表1に示す。本発明のプライマーを得る方法は、上記の本発明のヌクレオチドを得る方法に於いて記載した通りである。また、本発明のプライマーは、標識物質で標識されていてもよい。本発明のプライマーを標識する方法としては、この分野で通常行われているオリゴヌクレオチドの標識方法が挙げられ、標識物質毎に適宜方法を選択すればよい。本発明のプライマーを標識物質で標識するために用いられる標識物質としては、放射性同位体や酵素、蛍光物質、発光物質、ビオチンなど公知の標識物質であればいずれも用いることができる。例えば、放射性同位体としては32P,33P,35S等が、酵素としてはアルカリホスファターゼ,西洋ワサビペルオキシダーゼ等が、蛍光物質としてはAlexa555,Alexa647インビトロジェン社、CyanineDye系のCy3,Cy5アマシャムバイオサイエンス株式会社、フルオレセイン等が、発光物質としてはAcridiniumEsterを含む化学発光試薬等が挙げられる。本発明のプライマーを放射性同位体で標識する方法としては、プライマーを合成する際に、放射性同位体で標識されたヌクレオチドを取り込ませることによって、プライマーを標識する方法や、プライマーを合成した後、放射性同位体で標識する方法等が挙げられる。具体的には、一般によく用いられているランダムプライマー法、ニックトランスレーション法、T4ポリヌクレオチドキナーゼによる5-末端標識法、ターミナルデオキシヌクレオチジルトランスフェラーゼを用いた3-末端標識法、RNAラベリング法等が挙げられる。本発明のプライマーを酵素で標識する方法としては、アルカリホスファターゼ,西洋ワサビペルオキシダーゼ等の酵素分子を、標識するプライマーに直接共有結合させる等の、この分野に於ける常法である直接標識法が挙げられる。本発明のプライマーを蛍光物質で標識する方法としては、例えばフルオレセイン標識したヌクレオチドをこの分野に於ける常法の標識手法によりプライマーに取り込ませる方法が挙げられる。また、リンカーアームを有するヌクレオチドを配列のオリゴヌクレオチド中に置換する方法例えば、NucleicAcidsRes1986年第14巻p6115参照でもヌクレオチドを蛍光物質で標識することができる。例えば、5位にリンカーアームを有するウリジンを特開昭60500717号公報に開示された合成法によりデオキシウリジンから化学合成し、そのデオキシウリジンを含有するオリゴヌクレオチドを合成し、次いでそのオリゴヌクレオチド鎖に蛍光物質を導入する方法がある特開昭6050717号公報。本発明のプライマーを発光物質で標識する方法及びビオチンで標識する方法としては、通常この分野で行われているヌクレオチドを発光標識又はビオチン標識する常法が挙げられる。本発明のプローブは、クラミジアトラコマティス検出用として用いられるもので、配列番号1又は配列番号2で表される塩基配列に基づいて設計され、且つクラミジアトラコマティスの内在性プラスミド遺伝子とハイブリダイズするオリゴヌクレオチドプローブ。以下、本発明のプローブと記載する場合がある。である。また、本発明のプローブは、配列番号10で表されるクラミジアトラコマティスの内在性プラスミド遺伝子の、塩基配列1に相当する塩基番号4133~塩基番号4277の領域若しくは塩基配列2に相当する塩基番号32~塩基番号176の領域の塩基配列、又はこれらの領域内のさらに特定の領域の塩基配列とハイブリダイズすることができるものを含む。更に本発明のプローブは、上記した領域の塩基配列の相補配列とハイブリダイズすることができるものを含む。本発明のプローブは、PCR等の核酸増幅反応、核酸ハイブリダイゼーション等の条件に合わせて、配列番号1若しくは配列番号2で表される塩基配列、又は配列番号1若しくは配列番号2で表される塩基配列に対する相補配列から、解離温度Tm値などを考慮して、適当な領域の適当な長さを選択して設計すればよい。但し、プローブに十分な特異性を持たせたいのならば、プローブ配列としての特異性を維持するために必要な塩基数を考慮して設計することが望ましい。例えば、核酸増幅法例えばTaqManTM法、MolecularBeacon法等等に用いるプローブとしては、10~50塩基、好ましくは15~40塩基、更に好ましくは20~30塩基の長さを有しているものが好ましい。また、例えば核酸ハイブリダイゼーション法例えばサザンハイブリダイゼーション等等に用いるプローブとしては、10~700塩基、好ましくは100~600塩基、更に好ましくは100~500塩基の長さを有しているものが好ましい。本発明のプローブに用いられる、配列番号1又は配列番号2で表される塩基配列に基づいて設計され、且つクラミジアトラコマティスの内在性プラスミド遺伝子とハイブリダイズするオリゴヌクレオチド本発明のオリゴヌクレオチドの具体例は、上記の本発明のオリゴヌクレオチドの説明に於いて記載した通りである。本発明のプローブの具体例としては、例えば上記した方法で配列番号1又は配列番号2で表される塩基配列に基づいて設計された、配列番号1~配列番号9のいずれかで表される塩基配列、又は配列番号1~配列番号9のいずれかで表される塩基配列に対する相補配列からなるオリゴヌクレオチドプローブが挙げられる。好ましいプローブとしては、配列番号8若しくは配列番号9のいずれかで表される塩基配列、又は配列番号8若しくは配列番号9のいずれかで表される塩基配列に対する相補配列からなるオリゴヌクレオチドプローブが挙げられる。本発明のプローブを得る方法は、上記の本発明のヌクレオチドを得る方法に於いて記載した通りである。さらに、本発明のプローブは、標識物質で標識されていてもよい。本発明のプローブを標識物質で標識するために用いられる標識物質としては、放射性同位体や酵素、蛍光物質、発光物質、ビオチンなど公知の標識物質であればいずれも用いることができる。本発明のプローブを標識物質で標識するために用いられる、標識物質の具体例及び標識方法としては、本発明のプライマーの標識方法の説明に記載した方法と同じ方法が挙げられる。また、後述するリアルタイム検出法例えばTaqManTMリアルタイムPCR法等のリアルタイムPCRによる検出法に於いて用いられる標識プローブとしては、例えばリアルタイムPCR法において通常用いられている5末端がレポーター蛍光物質で標識され、3末端がクエンチャー色素で標識された本発明のプローブが挙げられる。本発明に係るプローブの5末端を標識するレポーター蛍光物質としては、カルボキシフルオレセインFAMTM、AppleraCorporation商品名、ヘキサクロロフルオレセインHEX、テトラクロロフルオレセイン、TexasRedTMMolecularProbes社商品名、Cy5、VIC等が挙げられる。本発明に係るプローブの3末端を標識するクエンチャー色素としては、例えばカルボキシテトラメチルローダミンTAMRATM、AppleraCorporation商品名等の蛍光物質、BlackHoleQuencher色素BHQTM、BiosearchTechnologiesIncNovatoCA商品名,4phenylazobenzoicacid等の非蛍光物質が挙げられる。具体的な標識プローブとしては、例えば、配列番号8若しくは配列番号9のいずれかで表される塩基配列、又は配列番号8若しくは配列番号9のいずれかで表される塩基配列に対する相補配列からなるオリゴヌクレオチドをレポーター蛍光物質とクエンチャー色素で標識した標識プローブが挙げられる。後述するTaqManTMリアルタイム検出法による検出法においても、上記した標識プローブを用いることができる。本発明のクラミジアトラコマティスの検出方法における検出とは、クラミジアトラコマティスの持つ内在性プラスミドの塩基配列中の一部を増幅検出することにより、患者検体などの各種臨床材料中のクラミジアトラコマティスを検出する場合や、単離、培養された菌体の菌種を判定する場合なども含まれる。また、本発明の検出法の用途としては、臨床分野における検出に限られず、研究室等における基礎実験での検出も含まれる。本発明に係るクラミジアトラコマティスの検出に用いられる検体specimenとしては、例えば尿,尿道スワブ懸濁液、頚管スワブ懸濁液、口腔スワブ懸濁液等の各種臨床検体が挙げられる。これら検体は、検出の前に予め検体中に存在する菌の濃縮、分離や、菌体からの核酸の分離、濃縮などの操作を前処理として行ってもよい。その方法としては、酵素、界面活性剤、アルカリ、熱による処理などがある。また、本発明における試料としては、上記の各種臨床材料の他、培養菌体や、これらより単離、精製された核酸なども含まれる。また、増幅された核酸でもよい。上記試料からDNAを抽出精製するには、検体からのクラミジアDNA抽出に用いられる常法に従って行えばよい。例えば、下記の方法で行えばよい。まず、試料中のクラミジアの細胞壁を破壊する必要がある。その方法としては、例えば菌体を試料とする場合には、例えばSDS等の界面活性剤や、グアニジンチオシアネートGTC等の蛋白変性剤で菌体を処理してクラミジアの膜構造を破壊する方法、又は菌体をガラスビーズ等によって物理的に破砕する方法等が挙げられる。クラミジアの細胞壁を破壊した後、この分野で一般的なDNAの調製法[フェノールクロロホルム抽出、エタノール沈殿法、Rapidandsimplemethodforpurificationofnucleicacids、JClinMicrobiol1990Mar283495503BoomRSolCJSalimansMMJansenCLWertheimvanDillenPMvanderNoordaaJに記載された方法、イソプロパノールを用いて沈殿する方法等]によりDNAの抽出及び精製を行えばよい。DNAの抽出及び精製には、そのための様々なキットが市販されているので、それを用いてもよい。例えば株キアゲン製イオン交換樹脂タイプDNA抽出精製キットGenomictip等を用いてDNAの抽出、精製を行えばよい。本発明のクラミジアトラコマティスの検出方法は、配列番号1又は配列番号2で表される塩基配列に基づいて設計され、且つクラミジアトラコマティスの内在性プラスミド遺伝子とハイブリダイズするオリゴヌクレオチド本発明のオリゴヌクレオチドをプライマー本発明のプライマーとして用い、試料中の核酸を鋳型として核酸増幅反応を行い、当該反応の結果生じるものを検出することを特徴とする、クラミジアトラコマティスの検出方法。である。上記方法はすなわち、配列番号10で表されるクラミジアトラコマティスの内在性プラスミド遺伝子の、塩基番号4133~塩基番号4277の領域配列番号1若しくは塩基番号32~塩基番号176配列番号2の領域、又はこれらの領域内の更に特定の領域を標的とし、試料中にこれらの領域の塩基配列を持つオリゴヌクレオチドが存在するか否かを確認することにより、クラミジアトラコマティスを検出する方法である。PCR等の核酸増幅反応において用いられる本発明のプライマーの具体例としては、例えば配列番号3~配列番号7のいずれかで表される塩基配列、又は配列番号3~配列番号7のいずれかで表される塩基配列に対する相補配列からなるオリゴヌクレオチドプライマーが挙げられる。また、核酸増幅反応に用いられる、好ましいプライマーの組合せプライマー対としては、下記のものが挙げられる。1配列番号3で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドプライマーと、配列番号4で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドプライマー、2配列番号5で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドプライマーと、配列番号6で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドプライマー、3配列番号7で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドプライマーと、配列番号6で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドプライマー。上記プライマーを用いたリアルタイムPCR等の核酸増幅反応に用いられるその他のデオキシリボヌクレオシド三リン酸dATP、dCTP、dGTP、dTTP、DNAポリメラーゼ等の試薬は、通常この分野で用いられているものを用いればよく、その条件、手法等は、本発明のプライマー及びプローブを用いる以外は、PCR法の一般的なプロトコルに従って行えばよい。以下に、本発明のクラミジアトラコマティスの検出方法の具体例について説明する。A本発明のオリゴヌクレオチドをプライマーとして用い、試料中の核酸を鋳型として核酸増幅反応を行い、当該反応の結果生じるものを検出することを特徴とする、クラミジアトラコマティスの検出方法Aの方法において、本発明のプライマーを用いて核酸増幅反応を行う方法としては、例えば、本発明のプライマーを用い、試料中の核酸を鋳型として用いてDNAポリメラーゼ等による核酸増幅反応例えばポリメラーゼ連鎖反応PCR法、LAMPLoopmediatedIsothermalAmplification法TsugunoriNotomietalNucleicAcidRes28e632000、ICANTMIsothermalandChimericprimerinitiatedAmplificationofNucleicacids法臨床病理51106110672003Nov、LCR法特開平4211399号、SDAと得られた増幅曲線が交差したCt値thresholdcyclevalueを得る。そのCt値を検量線に当てはめることにより、試料中のクラミジアトラコマティスのゲノムDNA量コピー数を得ることができる。本発明のクラミジアトラコマティスの検出方法における、TaqManTMリアルタイムPCR法の具体例としては、例えば下記の方法が挙げられる。1配列番号3で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドプライマーと、配列番号4で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドプライマーと、配列番号8で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドをレポーター色素とクエンチャー色素で標識した標識プローブを用いて、試料中の核酸を鋳型として核酸増幅反応を行い、該標識プローブから遊離した標識物質を検出する、2配列番号5で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドプライマーと、配列番号6で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドプライマーと、配列番号9で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドをレポーター色素とクエンチャー色素で標識した標識プローブを用いて、試料中の核酸を鋳型として核酸増幅反応を行い、該標識プローブから遊離した標識物質を検出する、3配列番号7で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドプライマーと、配列番号6で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドプライマーと、配列番号9で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドをレポーター色素とクエンチャー色素で標識した標識プローブを用いて、試料中の核酸を鋳型として核酸増幅反応を行い、該標識プローブから遊離した標識物質を検出する。本発明に係るTaqManTMリアルタイムPCR法によるクラミジアトラコマティスの検出方法の一例として、上記した本発明のプライマーTcTIFw01とプライマーTcTIRv01を用いて、クラミジアトラコマティスを検出する場合を例にとって説明すると、以下の通りである。まず、公知の方法により、クラミジアトラコマティスを検出すべき試料被検試料中から精製DNA試料を得る。別に、例えばDNAシンセサイザーを用いて、ホスホアミダイト法にて、配列番号3で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチド、及び配列番号4で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチドを合成する。また、TcTIFw01とTcTIRv01のプライマー対を用いたPCRで増幅されると予想される塩基配列から、プローブとして利用するための配列として、配列番号8で表される塩基配列を設計し、この塩基配列を持つオリゴヌクレオチドを合成する。このオリゴヌクレオチドの5末端にレポーター色素のFAMを、3末端にレポーター消光体のTAMRAを常法により結合し、蛍光標識プローブを得る。上記で合成したTcTIFw01およびTcTIRv01を増幅用プライマーとして用い、例えば下記の通りリアルタイムPCRを行う。すなわち、各01~2μM、好ましくは各1μMのプライマーTcTIFw01及びプライマーTcTIRv01、100~1000nMの蛍光標識プローブ、10~40mMMgCl2、KCl、BSA、コール酸ナトリウム、0005~02TritonX100、夫々02mM程度のdATP、dCTP、dGTP、dTTP、10~80単位mlのTaqDNAポリメラーゼを含有する10mMTrisHCl緩衝液pH89を調製し、PCR用反応液とする。このPCR用反応液20μlに精製DNA試料1ngを加え、PCR用試料を得る。このPCR用試料を用い、リアルタイムPCR検出装置等を用いてリアルタイムPCRを行う。反応は30~50回サイクル繰り返し、1サイクル毎にレポーター色素由来の蛍光強度量を測定する。この場合、レポーター色素由来の蛍光が測定された場合に、クラミジアトラコマティス陽性と判定される。更に、上記した方法で検量線を作成することによって、試料被検試料中のクラミジアトラコマティスの数も知ることができる。A-2インターカレーター法公知のインターカレーターを利用してリアルタイムPCR等のリアルタイム核酸増幅反応を行う、通常のインターカレーター法によって、核酸増幅反応の結果生じるものを検出することができる。インターカレーター法は、核酸増幅反応の後に電気泳動を行う必要がないので、臨床検査の分野等において、迅速に検出を行う必要がある場合には、有効な方法である。インターカレーター法を利用した本発明に係る検出法に用いられるプライマーとしては、本発明のプライマーが用いられる。好ましい本発明のプライマーとしては、上記したPCR法等の核酸増幅反応において用いられるものが挙げられ、その好ましい具体例及び好ましいプライマーの組合せも上記したとおりである。本発明に係るインターカレーター法に用いられるインターカレーターとしては、通常この分野で用いられているインターカレーターであれば、何でも用いることができるが、例えばSYBRTMGreenI、エチジウムブロマイド、フルオレン等がある。インターカレーター法を利用した、核酸増幅反応の結果生じるものを検出する方法の例を説明すると、以下の通りである。本発明のプライマーと、インターカレーター例えばSYBRTMGreenIを用い、クラミジアトラコマティスを検出すべき試料被検試料から精製した精製DNA試料を鋳型として用いて、TaqDNAポリメラーゼ等のポリメラーゼを用いたリアルタイムPCRを行う。そしてプライマー伸長産物の増幅量と相関してインターカレーションするインターカレーター由来の蛍光強度を測定する。次いで、横軸をプライマー伸長産物2本鎖DNAの解離温度、縦軸に蛍光強度の1次微分変化量をとった融解曲線を作成する。これを用いて、プライマー伸長産物の融解曲線解析を行い、ピークの検出を行う。一方、クラミジアトラコマティスのtypestrain基準株を用いて同様の測定を行い、ピークの検出を行う。被検試料を用いて得られた結果、単一のピークが得られ、かつそのピークのTm値Tmピーク値がクラミジアトラコマティスの基準株を用いて得られたTmピーク値と同じ場合に、被検試料はクラミジアトラコマティス陽性と判定される。但し、同じ機器を用いて被検試料中のクラミジアトラコマティスの検出を行う場合、一度基準株のTmピーク値を確認しておけば、以後の被検試料の検査は、このTmピーク値を用いれば良く、検査毎に改めて基準株のTmピーク値の確認を行う必要はない。また、インターカレーター法を利用した方法で得られた測定値をもとに、リアルタイムPCRで行われる常法に従って、検量線を作成することもできるので、その検量線を用いて試料中にあるクラミジアラトラコマティスのゲノムDNA量コピー数を得ることができる。検量線の作成方法は、リアルタイムPCR法に於いて通常行われている常法に従えばよい。例えば、標準としてコピー数既知希釈系列のクラミジアトラコマティスのゲノムDNA試料を用い、上記方法に従いリアルタイムPCRを行い、インターカレーター由来の蛍光強度を測定し、同様に増幅曲線を作成する。得られた増幅曲線から常法によりCt値を得る。そして、リアルタイムPCRに用いた各PCR用DNA試料のコピー数の対数値x軸に対するCt値y軸をプロットし、各Ctに対して得られた近似曲線を検量線とすればよい。試料中のクラミジアトラコマティスのゲノムDNAの数コピー数を定量するには、上記した如き常法により得られた検量線を用いればよい。すなわち、クラミジアトラコマティスを検出する試料中からDNAを分離精製した後、得られたDNA試料について、同様にインターカレーター法によるリアルタイムPCRを行い、同様に増幅曲線を作成し、検量線を作成したときのThresholdlineと得られた増幅曲線が交差したCt値thresholdcyclevalueを得る。そのCt値を検量線に当てはめることにより、試料中のクラミジアトラコマティスのゲノムDNA量コピー数を得ることができる。本発明に係る、インターカレーターを用いたリアルタイムPCR法によるクラミジアトラコマティスの検出方法の一例として、上記した本発明のプライマーTcTIFw01とプライマーTcTIRv01を用いて、クラミジアトラコマティスを検出する場合を例にとって説明すると、以下の通りである。まず、クラミジアトラコマティスを検出すべき試料被検試料中から、公知の方法により精製DNA試料を得る。別に、例えばDNAシンセサイザーを用いて、ホスホアミダイト法にて、配列番号1で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチドTcTIFw01、及び配列番号2で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチドTcTIRv01を合成する。合成したTcTIFw01およびTcTIRv01を増幅用プライマーとして用い、例えば下記の通りリアルタイムPCRを行う。すなわち、プライマーTcTIFw01と、プライマーTcTIRv01を各50~2000nM、インターカレーター[例えばSYBRTMGreenI]を原液の約5~100000倍希釈、10~40mMMgCl2、KCl、BSA、コール酸ナトリウム、0005~02TritonX100、夫々02mM程度のdATP、dCTP、dGTP、dTTP、10~80単位mlのポリメラーゼ例えばTaqDNAポリメラーゼを含有する10mMTrisHCl緩衝液pH89を調製し、PCR用反応液とする。該PCR用反応液に、クラミジアトラコマティスを検出すべき試料被検試料から精製した精製DNA試料を加え、PCR用試料とする。このPCR用試料を用い、リアルタイムPCR検出装置等を用いてリアルタイムPCRを行う。反応は30~50回サイクル繰り返し、1サイクル毎にプライマー伸長産物の増幅量と相関してインターカレーションするSYBRTMGreenIの蛍光強度を測定する。次いで、横軸をプライマー伸長産物2本鎖DNAの解離温度、縦軸に蛍光強度の1次微分変化量をとった融解曲線を作成する。これを用いて、プライマー伸長産物の融解曲線解析を行って、ピークの検出を行う。得られたピークが単一のピークであって、且つクラミジアトラコマティスのtypestrainを用いて同様に測定を行って得られたピークの解離温度と同じ位置に出現したことが確認された場合に、被検試料はクラミジアトラコマティス陽性と判定される。更に、上記した方法で検量線を作成することによって、試料被検試料中のクラミジアトラコマティスの数も知ることができる。A-3核酸増幅反応を行った後、得られたプライマー伸長産物について電気泳動を行い、その結果に基づいて行う方法該方法における核酸増幅反応の具体例は、上記したとおりである。例えば、通常のPCR法等の核酸増幅法や、リアルタイムPCR法等のリアルタイム核酸増幅法等が挙げられる。核酸増幅反応で得られたプライマー伸長産物について電気泳動を行い、その結果に基づいて、クラミジアトラコマティスを検出する方法としては、例えばA-3-1目的とする大きさ塩基対数のプライマー伸長産物画分を確認することにより行う方法、A-3-2標識プローブを用いたハイブリダイゼーションにより検出する方法、A-3-3電気泳動画分のインターカレーター由来の蛍光を検出する方法、等が挙げられる。電気泳動法の条件、操作方法等は、この分野で通常行われている常法に従えばよい。以下に、各方法について説明する。A-3-1目的とする大きさ塩基対数のプライマー伸長産物画分を確認することにより行う方法例えば、核酸増幅反応を行って得られたプライマー伸長産物について、電気泳動を行う。別に、核酸増幅反応に用いたプライマーの組合せから、増幅されるであろうプライマー伸長産物の大きさ塩基対数を予測しておく。そして、得られた電気泳動画分が予測された大きさのプライマー伸長産物に該当するか否かを、常法により確認すればよい。例えば、得られた電気泳動画分をエチジウムブロマイド等で染色して核酸種を視覚化するといった方法で、該画分を染色し、そのプライマー伸長産物の大きさを確認する等の方法が挙げられる。そして、使用したそのプライマーの組合せで増幅されると予想された塩基配列のオリゴヌクレオチド、又はその塩基対数の大きさの画分が確認された場合に、その被検試料はクラミジアトラコマティス陽性であると判定する。A-3-2標識プローブを用いたハイブリダイゼーションにより検出する方法例えば核酸増幅反応を行って得られたプライマー伸長産物について、電気泳動を行う。別に、核酸増幅反応に用いたプライマーの組合せから、増幅されると予測されるプライマー伸長産物の塩基配列を元に、プローブを設計し、それを標識物質で標識した標識プローブを得る。得られた電気泳動画分について、標識プローブに対するハイブリダイゼーションを行う。そして、該標識プローブの標識を検出し、その結果、該標識プローブとハイブリダイズした画分の存在が確認された場合に、その被検試料は、クラミジアトラコマティス陽性であると判定する。該方法で用いられるプローブ及びプローブを標識する標識物質の具体例、並びにプローブの標識方法は、上記したとおりである。A-3-3電気泳動画分のインターカレーター由来の蛍光を検出する方法、例えば、下記の方法が挙げられる。i本発明のオリゴヌクレオチドをプライマーとして用い、試料中の核酸を鋳型としてインターカレーター法による核酸増幅反応を行う、iiで得られたプライマー伸長産物について電気泳動を行う。iii電気泳動画分について通常の蛍光検出を行う。すなわち、核酸増幅反応によってプライマー伸長産物が得られれば、該プライマー伸長産物が取り込んだインターカレーター由来の蛍光が検出されるはずである。そこで、インターカレーター由来の蛍光を発する電気泳動画分が検出された場合に、その被検試料はクラミジアトラコマティス陽性であると判定する。また本発明は、核酸増幅工程において、RNA転写産物を利用した検出法を適用する事ができる。例えば、NASBAnucleicacidsequencebasedamplification法特許第2650159号、3SRselfsustainedsequencereplication法特公平7114718号、TAStranscriptionbasedamplificationsystem法特表平2500565号:国際公開WO8810315号、TMAtranscriptionmediatedamplification法特開平1146778号などが挙げられる。中でも逆転写酵素及びRNAポリメラーゼの協奏的作用逆転写酵素及びRNAポリメラーゼが協奏的に作用するような条件下で反応させる。を利用する一定温度核酸増幅法は、測定系を自動化する場合には適した方法である。標識プライマーを用いた核酸増幅反応を行い、得られたプライマー伸長産物の標識を測定する方法、A-4の方法としては、本発明のプライマーを上記した方法で標識した標識プライマーを用い、被検試料中の核酸を鋳型として用いてPCR等の核酸増幅反応を行い、得られたプライマー伸長産物の標識を検出測定し、標識を検出できた場合には、その被検試料はクラミジアトラコマティス陽性であると判定する方法が挙げられる。上記方法の場合、核酸増幅反応を行ったのち、プライマー伸長産物の標識を測定する前に、公知の方法で遊離の標識プライマーを除く操作を行ってもよい。遊離の標識プライマーを除く方法としては、例えば核酸増幅反応反応を行って得られた反応物中のプライマー伸長産物を、核酸を沈殿させる常法エタノール沈殿法、イソプロパノールを用いた沈殿法等により沈殿させた後、沈殿しなかった遊離の標識プライマーを含有する上清を除去する方法等が挙げられる。また、核酸増幅反応を行って得られた反応物を適当な条件下、ゲルクロマトグラフィーで処理して、プライマー伸長産物と遊離の標識プライマーを分離する方法、電気泳動法により分離する方法等も挙げられる。尚、以上の方法の他に、B本発明のプローブのみを用い、クラミジアトラコマティスを検出する方法もある。この方法では、いわゆる核酸増幅反応は行わない。具体的には、例えば下記のような方法が挙げられる。B-1標識物質で標識された固相担体に本発明のプローブを結合させたもの、又は固相担体に標識物質で標識された本発明のプローブ標識プローブを結合させたものを捕捉プローブとして用いる方法である。この補足プローブを、被検試料中の核酸とハイブリダイゼーションさせて、試料中のクラミジアトラコマティス由来の核酸を固相上に固定化させた後、標識プローブの標識、又は標識担体の標識を常法により検出する例えば、特開昭62265999号の記載参照。標識が検出された場合に、その被検試料は、クラミジアトラコマティス陽性であると判定する。B-2標識されていないの捕捉プローブと、本発明のプローブを標識した標識プローブを用いる方法である。この二つのプローブを被検試料中の核酸とハイブリダイゼーションさせて、固相担体上に補足プローブとクラミジアトラコマティス由来の核酸と標識プローブの複合体を形成させて、標識プローブの標識を測定するサンドイッチアッセイ例えば、特開昭5840099号の記載参照を行うことにより、クラミドフィラトラコマティスを検出する。標識が検出された場合に、その被検試料は、クラミジアトラコマティス陽性であると判定する。B-3ビオチンで標識した本発明のプローブを用い、試料中の核酸とハイブリダイゼーション後、試料中のクラミジアトラコマティス由来の核酸をアビジン結合担体で捕捉し、クラミジアトラコマティス由来核酸とアビジン結合担体との複合体を常法により検出する方法。複合体が検出された場合に、その被検試料は、クラミジアトラコマティス陽性であると判定する。尚、本発明のクラミジアトラコマティスの検出方法に用いられる試薬中には、通常この分野で用いられる試薬類、例えば緩衝剤、安定化剤、防腐剤等であって、共存する試薬等の安定性を阻害せず、PCR等の核酸増幅反応やハイブリダイゼーション反応を阻害しないものを用いることができる。また、その濃度も、通常この分野で通常用いられる濃度範囲から適宜選択すればよい。緩衝液の具体例を挙げると、例えばトリス緩衝液、リン酸緩衝液、ベロナール緩衝液、ホウ酸緩衝液、グッド緩衝液等、通常のPCR等の核酸増幅反応やハイブリダイゼーション反応を実施する場合に用いられている緩衝液は全て挙げられ、そのpHも特に限定されないが、通常5~9の範囲が好ましい。また、必要に応じて核酸合成酵素DNAポリメラーゼ、RNAポリメラーゼ、逆転写酵素など、酵素に応じた基質dNTP、rNTPなど、また二本鎖インターカレーターエチジウムブロマイド、SYBRTMGreenなどやFAMやTAMRA等の標識検出物質などが用いられる。本発明のクラミジアトラコマティス検出用試薬キットとしては、配列番号1又は配列番号2で表される塩基配列に基づいて設計され、且つクラミジアトラコマティスの内在性プラスミド遺伝子とハイブリダイズするオリゴヌクレオチドをプライマー又は/及びプローブとして含んでなる、クラミジアトラコマティス検出用試薬キット。が挙げられる。上記キットを構成する本発明のプライマー及び本発明のプローブの具体例は、上記した本発明のプライマー、本発明のプローブについての説明に記載したとおりである。本発明のプライマー及び/又はプローブは標識物質で標識されたものであってもよい。その標識物質の具体例は上記したとおりである。本発明のプライマーを含んでなるキットには、プライマー対を含む組成も含まれる。プライマー対の好ましい組合せは、下記の通りである。1配列番号3で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドプライマーと、配列番号4で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドプライマー、2配列番号5で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドプライマーと、配列番号6で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドプライマー、3配列番号7で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドプライマーと、配列番号6で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドプライマー。また、上記キットは、更に、本発明のオリゴヌクレオチドを標識物質で標識した標識プローブを含有していてもよい。例えば、下記の構成のものが挙げられる。1配列番号3で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドプライマー、配列番号4で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドプライマー、及び配列番号8で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドを標識物質で標識した標識プローブ、2配列番号5で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドプライマー、配列番号6で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドプライマー、及び配列番号9で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドを標識物質で標識した標識プローブ、3配列番号7で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドプライマー、配列番号6で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチドプライマー、及び配列番号9で表される塩基配列又はその相補配列からなるオリゴヌクレオチドを標識物質で標識した標識プローブ。これらのキットを構成する構成試薬の好ましい態様及び具体例は上記したとおりである。尚、本発明のクラミジアトラコマティス検出用試薬キットには、例えば緩衝剤、安定化剤、防腐剤等であって、共存する試薬等の安定性を阻害せず、PCRやハイブリダイゼーション反応を阻害しないものが含まれていてもよい。また、その濃度も、通常この分野で通常用いられる濃度範囲から適宜選択すればよい。緩衝液の具体例を挙げると、例えばトリス緩衝液、リン酸緩衝液、ベロナール緩衝液、ホウ酸緩衝液、グッド緩衝液等、通常のPCRやハイブリダイゼーション反応を実施する場合に用いられている緩衝液は全て挙げられ、そのpHも特に限定されないが、通常5~9の範囲が好ましい。また、必要に応じて核酸合成酵素DNAポリメラーゼ、RNAポリメラーゼ、逆転写酵素など、酵素に応じた基質dNTP、rNTPなど、また二本鎖インターカレーターSYBRTMGreen、エチジウムブロマイドなどやFAMやTAMRA等の標識検出物質などを含んでいてもよい。以下に実施例を挙げて、本発明を更に具体的に説明するが、本発明はこれらにより何等限定されるものではない。実施例で用いられる細菌はいずれも臨床分離株であり、培養後、コロニーの形状や従来の各種生化学的試験などによって菌種がすでに鑑別されているものである。実施例1.クラミジアトラコマティスCtrachomatisの内在性プラスミドpLGV440上の塩基配列をターゲットにしたDNA増幅反応を行ない、本発明のプライマーの特異性評価を行った。1ターゲット配列の決定本発明では、クラミジアトラコマティスの内在性プラスミドpLGV440の遺伝子配列配列番号10から、クラミジアトラコマティスの検出のためのターゲット配列として、配列番号10の中から4133~4277番目の145bpの塩基配列、そして32~176番目の145bpの塩基配列を選択した。それぞれの配列をTcTIFw01Rv01、TcTIFw02Rv02と命名した。TcTIFw01Rv01の塩基配列を配列表の配列番号1に、TcTIFw02Rv02の塩基配列を配列表の配列番号2に、夫々示す。2プライマーの設計と合成上記で特定したターゲット配列TcTIFw01Rv01の配列から、PCR増幅検出のためのプライマー、すなわち5cgctcaaggaccagcaaata3以下、TcTIFw01と呼ぶ。配列番号3及び5gctttttccgcatccaaac3以下、TcTIRv01と呼ぶ。配列番号4を設計した。オリゴヌクレオチドの合成をシグマジェノシス社に委託し、設計した塩基配列を持つ合成オリゴヌクレオチドを得た。これをプライマーとして用いた。3標識プローブの設計と合成上記で設計されたTcTIFw01とTcTIRv01のプライマーの組合せを用いたPCRで増幅されると予測される核酸配列から、プローブとして利用するための配列を設計した。設計したオリゴヌクレオチドの塩基配列は配列番号8で表されるものであり、TcTIFwRv1と命名した。更に、TcTIFwRv1の5末端にレポーター色素TexasRedTMを、3末端にレポーター消光体のBHQ2TMを化学結合させた標識オリゴヌクレオチドプローブを設計した。オリゴヌクレオチドの合成及び標識をシグマジェノシス社に委託し、設計した標識プローブを得た。4DNA試料の調製下記表2に示す各クラミジアクラミジア属:ChlamydiatrachomatisChlamydiapneumoniaeChlamydiapsittaciChlamydiapecorum、クラミドフィラ属:Chlamydophilacaviaeを常法に従って培養した後、公知の核酸精製手法を用いて精製ゲノムDNAを取得した。得られたそれぞれの精製DNAを、最終1ng/μl10mMTrisHCl緩衝液、pH89になるように調製し、DNA試料とした。尚、用いた細菌株は、すべて岡山大学医学部公文裕巳教授の研究室から供与された。5リアルタイムPCR1PCR用反応液の調製上記2で得られたプライマーTcTIFw01及びプライマーTcTIRv01各1μM、上記で得られた標識プローブ195nM、15mMMgCl2、80mMKCl、500μgmlBSA、01コール酸ナトリウム、01TritonX100、夫々02mMのdATP、dCTP、dGTP、dTTP及びTaqDNAポリメラーゼニッポンジーン製40単位mlを含有する10mMTrisHCl緩衝液pH89を調製し、PCR用反応液とした。2リアルタイムPCRPCR用反応液20μlに上記4で調製したDNA試料1μLを加えたものをPCR用試料とし、これを定量PCR反応用ガラスキャピラリーチューブロシュ社製に入れ、定量PCR専用サーマルサイクラー検出器LightCycler20、ロシュ社製を用いてリアルタイムPCRを行った。反応は、95°Cで10分間保温の後、95°Cで15秒間、60°Cで1分間の反応を50サイクル繰り返し、1サイクル毎にレポーター色素の由来の蛍光量を測定した。尚、蛍光量は、測定に用いたサーマルサイクラーの、測定に供したガラスキャピラリーチューブ毎に相対的な蛍光強度比を数値化する機能を用いて求めた。6結果得られたリアルタイムPCRの結果を下記表3にまとめた。表3において判定がpositiveとは、蛍光シグナルが検出されたことを示す。一方、判定がnegativeとは、蛍光シグナルが検出されなかったことを示す。表3の結果から明らかなとおり、本発明のプライマーTcTIFw01及びプライマーTcTIRv01の組合せと本発明の標識プローブを用いてリアルタイムPCRを行い、増幅された核酸の検出を行った結果、クラミジアトラコマティスの各々の株に由来するゲノムDNA試料を鋳型として用いた場合のみに、核酸増幅の結果生じる蛍光シグナルが確認できた。すなわち、これらの試料は、クラミジアトラコマティス陽性と判定できた。これに対し、クラミジアトラコマティス以外の菌体由来ゲノムDNAを鋳型として用いて、同じプライマーの組合せを用いて同様にリアルタイムPCRを行った場合には、該当する蛍光シグナルが確認できなかった。すなわち、これらの試料はすべてクラミジアトラコマティス陰性と判定できた。以上のことから、本発明のプライマー及びプローブを用いて核酸増幅反応を行うことにより、クラミジアトラコマティスを特異的に検出することが出来ることが判る。また、本発明のプライマー及びプローブはクラミジアトラコマティスに対する特異性が高い。そのため、クラミジアを単離することなく臨床材料から得られた核酸をそのまま、本発明のプライマー及びプローブを用いたPCR等の核酸増幅反応を用いた検出法に使用できる可能性が期待できる。実施例2.リアルタイム検出系を利用し、本発明で特定したプライマー配列を用いた遺伝子増幅系での検出感度の検定を行った。1プライマー実施例1で得られたTcTIFw01及びTcTIRv01を用いた。2標識プローブの作製実施例1で作製した、オリゴヌクレオチドTcTIFwRv1の5末端にレポーター色素TexasRedTMを、3末端にレポーター消光体のBHQ2TMを化学結合させた標識オリゴヌクレオチドプローブを用いた。3PCR用DNA試料の調製表2のCtrachomatisD株を常法に従って培養した後、実施例1と同様の方法で、公知の核酸精製手法を用いて精製ゲノムDNAを取得した。これを10mMTrisHCl緩衝液に溶解し、吸光度を測定した。得られた吸光度測定値より、モル数を算出することで、DNA試料中のゲノムDNA量ゲノムコピー数を決定した。次いで10mMTrisHCl緩衝液、pH89を用いてDNA試料を106105104103102105コピーμLの希釈系列に希釈したものを調製し、PCR用DNA試料とした。4リアルタイムPCR1PCR用反応液の調製上記で得られたプライマーTcTIFw01及びプライマーTcTIRv01各1μM、上記で得られた標識プローブ195nM、15mMMgCl2、80mMKCl、500μgmlBSA、01コール酸ナトリウム、01TritonX100、夫々02mMのdATP、dCTP、dGTP、dTTP及びTaqDNAポリメラーゼニッポンジーン製40単位mlを含有する10mMTrisHCl緩衝液pH89を調製し、PCR用反応液とした。2リアルタイムPCR配列TcTIFw01Rv01をPCRにおける増幅ターゲットとし、PCRの鋳型DNAとして、上記で調製したCtrachomatisD株由来のPCR用DNA試料希釈系列を用いた。まず、PCR用反応液20μlに、上記で調製したPCR用DNA試料各々1μLを加えたものをPCR用試料とし、これを定量PCR反応用ガラスキャピラリーチューブロシュ社製に入れ、定量PCR専用サーマルサイクラー検出器LightCycler20、ロシュ社製を用いてリアルタイムPCRを行った。反応は、95°Cで10分間保温の後、95°Cで15秒間、60°Cで1分間の反応を50サイクル繰り返し、1サイクル毎にレポーター色素由来の蛍光量を測定した。尚、蛍光量は、測定に用いたサーマルサイクラーの、測定に供したガラスキャピラリーチューブ毎に相対的な蛍光強度比を数値化する機能を用いて求めた。5結果得られた測定結果から、リアルタイムPCR法において行われている常法に従って、検量線を作成した。すなわち、各濃度のPCR用DNA試料毎に、PCRのサイクル数x軸に対するレポーター色素由来の蛍光量をプロットした増幅曲線を作成した。得られた増幅曲線を図1に示す。図1において、図中のa~hは、夫々106105104103102105コピーμLのPCR用DNA試料を用いた場合の増幅曲線を夫々示す。次いで、蛍光量が指数関数的に増幅しているRn部を選択し、ThresholdlineThを引いた。Thと各PCR用DNA試料の蛍光量が交差した点をThresholdcycleCt値とした。次いで用いた各PCR用DNA試料のゲノムのコピー数x軸、対数値に対するCt値y軸をプロットし、各Ct値に対して得られた近似曲線を検量線とした。得られた検量線を図2に示す。図2の結果から、検出感度として5copyreactionまでの増幅検出が可能であることがわかる。また、PCR効率PCREfficiency197995.3であった。以上の結果、本発明に係るオリゴヌクレオチドをプライマーとして用い、リアルタイムPCRを行えば、クラミジアトラコマティスが高感度で検出できることが判る。また、検量線が作成できたことより、本発明のプライマー及びプローブを用いたリアルタイムPCR法を行えば、クラミジアトラコマティスの定量が可能であることが判った。更に、本発明のプライマー及びプローブを用いたリアルタイムPCR法では、クラミジアトラコマティスのゲノムDNAが初期量として5コピー存在する条件でもクラミジアトラコマティスの検出が可能になり、高い検出感度でクラミジアトラコマティスの検出が行える事がわかる。更に、リアルタイムPCR法を利用した場合には、この蛍光強度をリアルタイムでモニタリングするので、鋳型DNAの初期量を正確に定量することができ、クラミジアトラコマティスの検出に有効である。実施例3リアルタイム検出系を利用し、本発明で特定したプライマー配列を用いた遺伝子増幅系での検出感度の検定を行った。1プライマーの設計と合成実施例11で特定したターゲット配列TcTIFw02Rv02の配列配列番号2から、PCR増幅検出のためのプライマー、すなわち5cagatttcctttcgcattaaaaa3以下、TcTIFw02mと呼ぶ。配列番号5、及び5tctcccatttctcccacaag3以下、TcTIRv02と呼ぶ。配列番号6を設計した。オリゴヌクレオチドの合成をシグマジェノシス社に委託し、設計した塩基配列を持つ合成オリゴヌクレオチドを得た。これをプライマーとして用いた。2標識プローブの設計と合成上記で設計されたTcTIFw02mとTcTIRv02のプライマーの組合せを用いたPCRで増幅されると予測される核酸配列から、プローブとして利用するための配列を設計した。設計したオリゴヌクレオチドの塩基配列は配列番号9で表されるものであり、TcTIFwRv2と命名した。更に、TcTIFwRv2の5末端にレポーター色素HEXTMを、3末端にレポーター消光体のBHQTMを化学結合させた標識オリゴヌクレオチドプローブを設計した。オリゴヌクレオチドの合成及び標識をシグマジェノシス社に委託し、設計した標識プローブを得た。3PCR用DNA試料の調製表2のCtrachomatisD株を常法に従って培養した後、実施例1と同様の方法で、公知の核酸精製手法を用いて精製ゲノムDNAを取得した。これを10mMTrisHCl緩衝液に溶解し、吸光度を測定した。得られた吸光度測定値より、モル数を算出することで、DNA試料中のゲノムDNA量ゲノムコピー数を決定した。次いで10mMTrisHCl緩衝液、pH89を用いてDNA試料を106105104103102105コピーμLの希釈系列に希釈したものを調製し、PCR用DNA試料とした。4リアルタイムPCR1PCR用反応液の調製上記で得られたプライマーTcTIFw02m及びプライマーTcTIRv02各1μM、上記3で得られた蛍光標識プローブ195nM、15mMMgCl2、80mMKCl、500μgmlBSA、01コール酸ナトリウム、01TritonX100、夫々02mMのdATP、dCTP、dGTP、dTTP及びTaqDNAポリメラーゼニッポンジーン製40単位mlを含有する10mMTrisHCl緩衝液pH89を調製し、PCR用反応液とした。2リアルタイムPCR配列TcTIFw02Rv02をPCRにおける増幅ターゲットとし、PCRの鋳型DNAとして、上記で調製したCtrachomatisD株由来のPCR用DNA試料希釈系列を用いた。まず、PCR用反応液20μlに、上記で調製したPCR用DNA試料各々1μLを加えたものをPCR用試料とし、96穴反応プレートマイクロアンプオプチカル96ウェルリアクションプレート、アプライドバイオシステムズジャパン社製のウェルに入れ、リアルタイムPCR検出装置ABI7500、アプライドバイオシステムズジャパン社製を用いてPCRを行った。反応は、95°Cで10分間保温の後、95°Cで15秒間、60°Cで1分間の反応を50サイクル繰り返し、1サイクル毎にレポーター色素由来の蛍光量を測定した。尚、蛍光量は、測定に用いたサーマルサイクラーの、測定に供したサンプルウェル毎に相対的な蛍光強度比を数値化する機能を用いて求めた。5結果得られた測定結果から、リアルタイムPCR法において行われている常法に従って、検量線を作成した。すなわち、各濃度のPCR用DNA試料毎に、PCRのサイクル数x軸に対するレポーター色素の蛍光量をプロットした増幅曲線を作成した。得られた増幅曲線を図3に示す。図3において、図中のa~hは、夫々106105104103102105コピーμLのPCR用DNA試料を用いた場合の増幅曲線を夫々示す。次いで、蛍光量が指数関数的に増幅しているRn部を選択し、ThresholdlineThを引いた。Thと各PCR用DNA試料の蛍光量が交差した点をThresholdcycleCt値とした。次いで用いた各PCR用DNA試料のゲノムのコピー数x軸、対数値に対するCt値y軸をプロットし、各Ctに対して得られた近似曲線を検量線とした。得られた検量線を図4に示す。得られた検量線の、回帰分析を行って求めた回帰直線式と相関係数は下記の通りである。y=-3.421358x40.971924R2=0.992401図4から明らかな通り、良好な直線性の良い検量線が得られた。よって、本発明のプライマー及びプローブを用いた核酸増幅反応を行えば、クラミジアトラコマティスの定量が可能であることが分かる。また、図4の結果から、検出感度として5copyreactionまでの増幅検出が可能であることが分かる。すなわち、本発明のプライマー及びプローブを用いた検出法を行えば、クラミジアトラコマティスのゲノムDNAが初期量として5コピーが存在する条件でも、クラミジアトラコマティスの検出が可能である。また、行ったPCRの増幅効率は961で、ほぼ100に近かった。以上のことから、本発明のプライマーTcTIFw02mとプライマーTcTIRv02の組合せと本発明の標識プローブとを用い、TcTIFw02Rv02をPCRにおける増幅ターゲットとしてリアルタイムPCRを行えば、本発明のプライマーTcTIFw01とプライマーTcTIRv01の組合せと本発明の標識プローブとを用い、TcTIFw01Rv01をPCRにおける増幅ターゲットとしてリアルタイムPCRを行った場合と同様、クラミジアトラコマティスが高感度且つ特異的に検出できることが分かる。更に、リアルタイムPCRを利用した場合では、この蛍光強度をリアルタイムでモニタリングするので、鋳型DNAの初期量を正確に定量することができ、この点でもクラミジアトラコマティスの検出に有効である。"