"ヒトジストロフィン遺伝子の第53番目のエクソンのスキッピングを可能にするアンチセンスオリゴマーであって、ヒトジストロフィン遺伝子の第53番目のエクソンの5’末端から第31~53番目、第31~54番目、第31~55番目、第31~56番目、第31~57番目、第31~58番目、第32~53番目、第32~54番目、第32~55番目、第32~56番目、第32~57番目、第32~58番目、第33~53番目、第33~54番目、第33~55番目、第33~56番目、第33~57番目、第33~58番目、第34~53番目、第34~54番目、第34~55番目、第34~56番目、第34~57番目、第34~58番目、第35~53番目、第35~54番目、第35~55番目、第35~56番目、第35~57番目、第35~58番目、第36~53番目、第36~54番目、第36~55番目、第36~56番目、第36~57番目又は第36~58番目のヌクレオチドからなる配列のいずれか1つに相補的な塩基配列からなる、アンチセンスオリゴマー。オリゴヌクレオチドである、請求項1に記載のアンチセンスオリゴマー。前記オリゴヌクレオチドを構成する少なくとも1つのヌクレオチドの糖部分及び/又はリン酸結合部分が修飾されている、請求項2に記載のアンチセンスオリゴマー。前記オリゴヌクレオチドを構成する少なくとも1つのヌクレオチドの糖部分が、2’位の-OH基が、OR、R、R’OR、SH、SR、NH2、NHR、NR2、N3、CN、F、Cl、Br及びIからなる群より選択されるいずれかの基で置換されたリボースである、請求項3に記載のアンチセンスオリゴマー。上記Rは、アルキル又はアリールを示し、上記R’は、アルキレンを示す。前記オリゴヌクレオチドを構成する少なくとも1つのヌクレオチドのリン酸結合部分が、ホスホロチオエート結合、ホスホロジチオエート結合、アルキルホスホネート結合、ホスホロアミデート結合、及びボラノフォスフェート結合からなる群より選択されるいずれか1つのものである、請求項3又は4に記載のアンチセンスオリゴマー。モルホリノオリゴマーである、請求項1に記載のアンチセンスオリゴマー。ホスホロジアミデートモルホリノオリゴマーである、請求項6に記載のアンチセンスオリゴマー。5’末端が、下記化学式1~3のいずれかの基である、請求項6又は7に記載のアンチセンスオリゴマー。ヒトジストロフィン遺伝子の第53番目のエクソンの5’末端から第32~56番目又は第36~56番目のヌクレオチドからなる配列に相補的な塩基配列からなる、請求項1~8のいずれか1項に記載のアンチセンスオリゴマー。配列番号2~37からなる群より選択されるいずれか1つに示す塩基配列からなる、請求項1~8のいずれか1項に記載のアンチセンスオリゴマー。配列番号11、17、23、29及び35からなる群より選択されるいずれか1つの塩基配列からなる、請求項1~8のいずれか1項に記載のアンチセンスオリゴマー。配列番号11又は35のいずれか1つの塩基配列からなる、請求項1~8のいずれか1項に記載のアンチセンスオリゴマー。請求項1~12のいずれか1項に記載のアンチセンスオリゴマー、その医薬的に許容可能な塩又は水和物を有効成分とする、筋ジストロフィー治療用医薬組成物。以下、本発明を詳細に説明する。以下の実施の形態は、本発明を説明するための例示であり、本発明をこの実施の形態のみに限定する趣旨ではない。本発明は、その要旨を逸脱しない限り、様々な形態で実施をすることができる。なお、本明細書において引用した全ての文献、および公開公報、特許公報その他の特許文献は、参照として本明細書に組み込むものとする。また、本明細書は、2010年9月1日に出願された本願優先権主張の基礎となる日本国特許出願特願2010-196032号の明細書及び図面に記載の内容を包含する。1.アンチセンスオリゴマー本発明は、ヒトジストロフィン遺伝子の第53番目のエクソンのスキッピングを可能にするアンチセンスオリゴマーであって、ヒトジストロフィン遺伝子の第53番目のエクソンの5’末端から第31~53番目、第31~54番目、第31~55番目、第31~56番目、第31~57番目、第31~58番目、第32~53番目、第32~54番目、第32~55番目、第32~56番目、第32~57番目、第32~58番目、第33~53番目、第33~54番目、第33~55番目、第33~56番目、第33~57番目、第33~58番目、第34~53番目、第34~54番目、第34~55番目、第34~56番目、第34~57番目、第34~58番目、第35~53番目、第35~54番目、第35~55番目、第35~56番目、第35~57番目、第35~58番目、第36~53番目、第36~54番目、第36~55番目、第36~56番目、第36~57番目又は第36~58番目のヌクレオチドからなる配列以下、標的配列ともいう。のいずれか1つに相補的な塩基配列からなる、アンチセンスオリゴマー以下、本発明のオリゴマーというを提供する。[ヒトジストロフィン遺伝子の第53番目のエクソン]本発明において、遺伝子には、ゲノム遺伝子以外に、cDNA、mRNA前駆体及びmRNAも含まれる。好ましくは、遺伝子は、mRNA前駆体、即ち、pre-mRNAである。ヒトゲノムにおいて、ヒトジストロフィン遺伝子は遺伝子座Xp21.2に存在する。ヒトジストロフィン遺伝子は、3.0Mbpのサイズを有しており、既知のヒト遺伝子としては最大の遺伝子である。但し、ヒトジストロフィン遺伝子のコード領域はわずか14kbに過ぎず、該コード領域は79個のエクソンとしてジストロフィン遺伝子内に分散しているRoberts,RG.,etal.,Genomics,16:536-5381993。ヒトジストロフィン遺伝子の転写物であるpre-mRNAは、スプライシングを受けて14kbの成熟mRNAを生成する。ヒトの野生型ジストロフィン遺伝子の塩基配列は公知であるGenBankAccessionNo.NM_004006。ヒトの野生型ジストロフィン遺伝子のエクソン53の塩基配列を配列番号1に示す。本発明のオリゴマーは、ヒトジストロフィン遺伝子のエクソン53のスキッピングにより、DMD型ジストロフィン遺伝子でコードされるタンパク質を、BMD型ジストロフィンタンパク質に改変することを目的として作製されたものである。従って、本発明のオリゴマーのエクソンスキッピングの対象となるジストロフィン遺伝子のエクソン53には、野生型だけではなく、変異型も含まれる。変異型のヒトジストロフィン遺伝子のエクソン53は、具体的には、以下のa又はbに記載のポリヌクレオチドである。a配列番号1の塩基配列と相補的な塩基配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェントな条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチド;b配列番号1の塩基配列に対して、90以上の同一性を有する塩基配列からなるポリヌクレオチド本明細書中、ポリヌクレオチドとは、DNA又はRNAを意味する。本明細書中、ストリンジェントな条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチドとは、例えば、配列番号1の塩基配列と相補的な塩基配列からなるポリヌクレオチドの全部又は一部をプローブとして、コロニーハイブリダイゼーション法、プラークハイブリダイゼーション法又はサザンハイブリダイゼーション法などを用いることにより得られるポリヌクレオチドをいう。ハイブリダイゼーションの方法としては、例えば、′′SambrookRussell,MolecularCloning:ALaboratoryManualVol.3,ColdSpringHarbor,LaboratoryPress2001′′及び′′Ausubel,CurrentProtocolsinMolecularBiology,JohnWileySons1987-1997′′などに記載されている方法を利用することができる。本明細書中、相補的な塩基配列とは、対象となる塩基配列とワトソンクリック対を形成する塩基配列に限定されるものではなく、揺らぎ塩基対Wobblebasepairを形成する塩基配列も含む。ここで、ワトソンクリック対とは、アデニン-チミン、アデニン-ウラシル及びグアニン-シトシン間に水素結合が形成される塩基対を意味し、揺らぎ塩基対とは、グアニン-ウラシル、イノシン-ウラシル、イノシン-アデニン及びイノシン-シトシン間に水素結合が形成される塩基対を意味する。また、相補的な塩基配列とは、対象となる塩基配列と100の相補性を有していなくてもよく、例えば、対象となる塩基配列に対して、1~3個、1~2個又は1個の非相補的塩基が含まれていてもよい。本明細書中、ストリンジェントな条件とは、低ストリンジェントな条件、中ストリンジェントな条件及び高ストリンジェントな条件のいずれでもよい。低ストリンジェントな条件は、例えば、5×SSC、5×デンハルト溶液、0.5SDS、50ホルムアミド、32°Cの条件である。また、中ストリンジェントな条件は、例えば、5×SSC、5×デンハルト溶液、0.5SDS、50ホルムアミド、42°C又は5×SSC、1SDS、50mMTris-HClpH7.5、50ホルムアミド、42°Cの条件である。高ストリンジェントな条件は、例えば、5×SSC、5×デンハルト溶液、0.5SDS、50ホルムアミド、50°C又は0.2×SSC、0.1SDS、65°Cの条件である。これらの条件において、温度を上げるほど高い同一性を有するポリヌクレオチドが効率的に得られることが期待できる。ただし、ハイブリダイゼーションのストリンジェンシーに影響する要素としては温度、プローブ濃度、プローブの長さ、イオン強度、時間、塩濃度等の複数の要素が考えられ、当業者であればこれらの要素を適宜選択することで同様のストリンジェンシーを実現することが可能である。なお、ハイブリダイゼーションに市販のキットを用いる場合は、例えばAlkphosDirectLabellingandDetectionSystemGEHealthcareを用いることができる。この場合は、キットに添付のプロトコールにしたがい、標識したプローブとのインキュベーションを一晩行った後、メンブレンを55°Cの条件下で0.1w/vSDSを含む1次洗浄バッファーで洗浄後、ハイブリダイズしたポリヌクレオチドを検出することができる。あるいは、配列番号1の塩基配列と相補的な塩基配列の全部又は一部に基づいてプローブを作製する際に、市販の試薬例えば、PCRラベリングミックスロシュダイアグノス社等を用いて該プローブをジゴキシゲニンDIGラベルした場合には、DIG核酸検出キットロシュダイアグノス社を用いてハイブリダイゼーションを検出することができる。上記のハイブリダイズ可能なポリヌクレオチド以外のポリヌクレオチドとしては、相同性検索ソフトウェアであるBLASTにより、デフォルトのパラメーターを用いて計算したときに、配列番号1のポリヌクレオチドと90以上、91以上、92以上、93以上、94以上、95以上、96以上、97以上、98以上、99以上、99.1以上、99.2以上、99.3以上、99.4以上、99.5以上、99.6以上、99.7以上、99.8以上、又は99.9以上の同一性を有するポリヌクレオチドをあげることができる。なお、塩基配列の同一性は、カーリン及びアルチュールによるアルゴリズムBLASTBasicLocalAlignmentSearchToolProc.Natl.Acad.Sci.USA872264-2268,1990;ProcNatlAcadSciUSA90:5873,1993を用いて決定できる。BLASTのアルゴリズムに基づいたBLASTNやBLASTXと呼ばれるプログラムが開発されているAltschulSF,etal:JMolBiol215:403,1990。BLASTNを用いて塩基配列を解析する場合は、パラメーターは、例えばscore=100、Wordlength=12とする。BLASTとGappedBLASTプログラムを用いる場合は、各プログラムのデフォルトパラメーターを用いる。エクソン53の5’末端から第31~53番目、第31~54番目、第31~55番目、第31~56番目、第31~57番目、第31~58番目、第32~53番目、第32~54番目、第32~55番目、第32~56番目、第32~57番目、第32~58番目、第33~53番目、第33~54番目、第33~55番目、第33~56番目、第33~57番目、第33~58番目、第34~53番目、第34~54番目、第34~55番目、第34~56番目、第34~57番目、第34~58番目、第35~53番目、第35~54番目、第35~55番目、第35~56番目、第35~57番目、第35~58番目、第36~53番目、第36~54番目、第36~55番目、第36~56番目、第36~57番目及び第36~58番目のヌクレオチドからなる配列に相補的な塩基配列の例を以下の表に示す。本発明のオリゴマーは、好ましくは、ヒトジストロフィン遺伝子の第53番目のエクソンの5’末端から第32~56番目、第33~56番目、第34~56番目、第35~56番目又は第36~56番目のヌクレオチドからなる配列のいずれか1つに相補的な塩基配列例えば、配列番号11、配列番号17、配列番号23、配列番号29又は配列番号35からなる。好ましくは、本発明のオリゴマーは、ヒトジストロフィン遺伝子の第53番目のエクソンの5’末端から第32~56番目又は第36~56番目のヌクレオチドからなる配列のいずれか1つに相補的な塩基配列例えば、配列番号11又は配列番号35からなるものである。ヒトジストロフィン遺伝子の第53番目のエクソンのスキッピングを可能にするとは、ヒトジストロフィン遺伝子の転写物例えば、pre-mRNAのエクソン53に相当する部位に本発明のオリゴマーが結合することにより、該転写物がスプライシングを受けた際に、例えばエクソン52が欠失したDMD患者の場合、エクソン51の3’末端に相当する塩基配列の3’側にエクソン54の5’末端に相当する塩基配列が連結し、コドンのフレームシフトが起こっていない成熟mRNAが形成されることを意味する。従って、本発明のオリゴマーは、ヒトジストロフィン遺伝子のエクソン53のスキッピングを可能にする限り、ターゲット配列に対して100相補的な塩基配列を有していなくてもよい。例えば、本発明のオリゴマーには、ターゲット配列に対して、1~3個、1~2個又は1個の非相補的塩基が含まれていてもよい。ここで、前記結合は、本発明のオリゴマーとヒトジストロフィン遺伝子の転写物とを混合した場合に、生理的条件下で両者がハイブリダイズして二本鎖を形成することを意味する。上記生理的条件下とは、生体内と類似のpH、塩組成、温度に調節された条件を意味する。例えば、25~40°C、好ましくは37°C、pH5~8、好ましくは、pH7.4であって、塩化ナトリウム濃度が150mMの条件が挙げられる。ヒトジストロフィン遺伝子のエクソン53のスキッピングが生じたか否かは、ジストロフィン発現細胞例えば、ヒト横紋筋肉腫細胞に本発明のオリゴマーを導入し、前記ジストロフィン発現細胞のtotalRNAから、ヒトジストロフィン遺伝子のmRNAのエクソン53の周辺領域をRT-PCR増幅し、該PCR増幅産物に対してnestedPCR又はシークエンス解析を行うことにより確認することができる。スキッピング効率は、ヒトジストロフィン遺伝子のmRNAを被検細胞から回収し、該mRNAのうち、エクソン53がスキップしたバンドのポリヌクレオチド量Aと、エクソン53がスキップしなかったバンドのポリヌクレオチド量Bを測定し、これらA及びBの測定値に基づき、以下の式に従って計算することができる。スキッピング効率=A/AB×100本発明のオリゴマーとしては、例えば、18~28塩基の長さを有する、オリゴヌクレオチド、モルホリノオリゴマー、又はペプチド核酸PeptideNucleicAcid:PNAオリゴマーを挙げることができる。21~25塩基の長さが好ましく、モルホリノオリゴマーが好ましい。前記オリゴヌクレオチド以下、本発明のオリゴヌクレオチドというは、ヌクレオチドを構成単位とする本発明のオリゴマーであり、かかるヌクレオチドは、リボヌクレオチド、デオキシリボヌクレオチド又は修飾ヌクレオチドのいずれであってもよい。修飾ヌクレオチドとは、リボヌクレオチド又はデオキシリボヌクレオチドを構成する核酸塩基、糖部分、及びリン酸結合部分の全部又は一部が修飾されているものをいう。核酸塩基としては、例えば、アデニン、グアニン、ヒポキサンチン、シトシン、チミン、ウラシル又はそれらの修飾塩基を挙げることができる。かかる修飾塩基としては、例えば、シュードウラシル、3-メチルウラシル,ジヒドロウラシル、5-アルキルシトシン例えば、5-メチルシトシン、5-アルキルウラシル例えば、5-エチルウラシル、5-ハロウラシル5-ブロモウラシル、6-アザピリミジン、6-アルキルピリミジン6-メチルウラシル、2-チオウラシル、4-チオウラシル、4-アセチルシトシン、5-カルボキシヒドロキシメチルウラシル、5’-カルボキシメチルアミノメチル-2-チオウラシル、5-カルボキシメチルアミノメチルウラシル、1-メチルアデニン、1-メチルヒポキサンチン、2,2-ジメチルグアニン、3-メチルシトシン、2-メチルアデニン、2-メチルグアニン、N6-メチルアデニン、7-メチルグアニン、5-メトキシアミノメチル-2-チオウラシル、5-メチルアミノメチルウラシル、5-メチルカルボニルメチルウラシル、5-メチルオキシウラシル、5-メチル-2-チオウラシル、2-メチルチオ-N6-イソペンテニルアデニン、ウラシル-5-オキシ酢酸、2-チオシトシン、プリン、2,6-ジアミノプリン、2-アミノプリン、イソグアニン、インドール、イミダゾール、キサンチン等が挙げられるが、これらに限定されるものではない。糖部分の修飾としては、例えば、リボースの2’位の修飾及び糖のその他の部分の修飾を挙げることができる。リボースの2’位の修飾としては、例えば、リボースの2’位の-OH基をOR、R、R’OR、SH、SR、NH2、NMR、NR2、N3、CN、F、Cl、Br、Iに置換する修飾を挙げることができる。ここで、Rはアルキル又はアリールを表す。R’はアルキレンを表す。糖のその他の部分の修飾としては、例えば、リボース又はデオキシリボースの4’位のOをSに置換したもの、糖の2′位と4′位を架橋したもの、例えば、LNALockedNucleicAcid又はENA2′-O,4′-C-Ethylene-bridgedNucleicAcidsなどが挙げられるが、これらに限定されるものではない。リン酸結合部分の修飾としては、例えば、ホスホジエステル結合をホスホロチオエート結合、ホスホロジチオエート結合、アルキルホスホネート結合、ホスホロアミデート結合、ボラノフォスフェート結合Enyaetal:BioorganicMedicinalChemistry,2008,18,9154-9160に置換する修飾を挙げることができる例えば、特許再公表公報第2006/129594号及び第2006/038608号を参照。アルキルとしては、直鎖状または分枝鎖状の炭素数1~6のアルキルが好ましい。具体的には、例えば、メチル、エチル、n-プロピル、イソプロピル、n-ブチル、イソブチル、sec-ブチル、tert-ブチル、n-ペンチル、イソペンチル、ネオペンチル、tert-ペンチル、n-ヘキシル、イソヘキシルが挙げられる。当該アルキルは置換されていてもよく、かかる置換基としては、例えば、ハロゲン、アルコキシ、シアノ、ニトロを挙げることができ、これらが1~3個置換されていてもよい。シクロアルキルとしては、炭素数5~12のシクロアルキルが好ましい。具体的には、例えば、シクロペンチル、シクロヘキシル、シクロヘプチル、シクロオクチル、シクロデシル、シクロドデシルが挙げられる。ハロゲンとしては、フッ素、塩素、臭素、ヨウ素を挙げることができる。アルコキシとしては、直鎖状または分枝鎖状の炭素数1~6のアルコキシ、例えば、メトキシ、エトキシ、n-プロポキシ、イソプロポキシ、n-ブトキシ、イソブトキシ、sec-ブトキシ、tert-ブトキシ、n-ペンチルオキシ、イソペンチルオキシ、n-ヘキシルオキシ、イソヘキシルオキシ等を挙げることができる。とりわけ、炭素数1~3のアルコキシが好ましい。アリールとしては、炭素数6~10のアリールが好ましい。具体的には、例えば、フェニル、α-ナフチル、β-ナフチルを挙げることができる。とりわけフェニルが好ましい。当該アリールは置換されていてもよく、かかる置換基としては、例えば、アルキル、ハロゲン、アルコキシ、シアノ、ニトロを挙げることができ、これらが1~3個置換されていてもよい。アルキレンとしては、直鎖状または分枝鎖状の炭素数1~6のアルキレンが好ましい。具体的には、例えば、メチレン、エチレン、トリメチレン、テトラメチレン、ペンタメチレン、ヘキサメチレン、2-エチルトリメチレン、1-メチルテトラメチレンを挙げることができる。アシルとしては、直鎖状若しくは分枝鎖状のアルカノイル、又はアロイルを挙げることができる。アルカノイルとしては、例えば、ホルミル、アセチル、2-メチルアセチル、2,2-ジメチルアセチル、プロピオニル、ブチリル、イソブチリル、ペンタノイル、2,2-ジメチルプロピオニル、ヘキサノイル等が挙げられる。アロイルとしては、例えば、ベンゾイル、トルオイル、ナフトイルを挙げることができる。かかるアロイルは置換可能な位置において置換されていてもよく、アルキルで置換されていてもよい。本発明のオリゴヌクレオチドは、好ましくは、リボースの2’位の-OH基がメトキシで置換され、リン酸結合部分がホスホロチオエート結合である、下記一般式で表される基を構成単位とする本発明のオリゴマーである。式中、Baseは、核酸塩基を表す。本発明のオリゴヌクレオチドは、各種自動合成装置例えば、AKTAoligopilotplus10/100GEHealthcareを用いて容易に合成することが可能であり、あるいは、第三者機関例えば、Promega社又はTakara社等に委託して作製することもできる。本発明のモルホリノオリゴマーは、下記一般式で表される基を構成単位とする本発明のオリゴマーである。式中、Baseは、前記と同義であり;Wは、以下のいずれかの式で表わされる基を表す。式中、Xは、-CH2R1、-O-CH2R1、-S-CH2R1、-NR2R3又はFを表し;R1は、H、アルキルを表し;R2及びR3は、同一又は異なって、H、アルキル、シクロアルキル、又は、アリールを表し;Y1は、O、S、CH2又はNR1を表し;Y2は、O、S又はNR1を表し;Zは、O又はSを表す。モルホリノオリゴマーは、好ましくは、以下の式で表わされる基を構成単位とするオリゴマーホスホロジアミデートモルホリノオリゴマー以下、PMOというである。式中、Base、R2、R3は、前記と同義である。モルホリノオリゴマーは、例えば、国際公開公報第1991/009033号、又は国際公開公報第2009/064471号に従って製造することができる。特に、PMOは、国際公開公報第2009/064471号に記載の方法に従って製造するか、又は以下に示す方法に従って製造することができる。[PMOの製法]PMOの1つの態様として、例えば、次の一般式Iで表される化合物以下、PMOIというを挙げることができる。[式中、各Base、R2、R3は、前記と同義であり;nは、1~99の範囲内にある任意の整数であり、好ましくは、18~28の範囲内にある任意の整数である。]PMOIは、公知の方法に従い製造することができるが、例えば、下記工程の操作を実施することにより製造することができる。下記工程に使用されている化合物及び試薬は、PMOの製造に一般的に使用されているものであれば特に限定されない。また、下記のすべての工程は、液相法又は固相法マニュアル又は市販の固相自動合成機を用いるで実施することができる。固相法でPMOを製造する場合、操作手順の簡便化及び合成の正確性の点から自動合成機を用いる方法が望ましい。1工程A:次の一般式IIで表される化合物以下、化合物IIというに酸を作用させることによって、次の一般式IIIで表される化合物以下、化合物IIIという。を製造する工程。[式中、n、R2、R3は、前記と同義であり;各BPは,独立して、保護されていてもよい核酸塩基を表し;Tは、トリチル基、モノメトキシトリチル基、又はジメトキシトリチル基を表し;Lは、水素、アシル、又は次の一般式IVで表される基以下、基IVという。を表す。]BPに係る核酸塩基としては、Baseと同じ核酸塩基を挙げることができる。但し、BPに係る核酸塩基のアミノ基又は水酸基は保護されていてもよい。かかるアミノ基の保護基としては、核酸の保護基として使用されるものであれば特に制限されず、具体的には、例えば、ベンゾイル、4-メトキシベンゾイル、アセチル、プロピオニル、ブチリル、イソブチリル、フェニルアセチル、フェノキシアセチル、4-tert-ブチルフェノキシアセチル、4-イソプロピルフェノキシアセチル、ジメチルアミノメチレンを挙げることができる。水酸基の保護基としては、例えば、2-シアノエチル、4-ニトロフェネチル、フェニルスルホニルエチル、メチルスルホニルエチル、トリメチルシリルエチル、置換可能な任意の位置で1~5個の電子吸引性基で置換されていてもよいフェニル、ジフェニルカルバモイル、ジメチルカルバモイル、ジエチルカルバモイル、メチルフェニルカルバモイル、1-ピロリジニルカルバモイル、モルホリノカルバモイル、4-tert-ブチルカルボキシベンジル、4-[ジメチルアミノカルボキシ]ベンジル、4-フェニルカルボキシベンジルを挙げることができる例えば、国際公開公報第2009/064471号公報参照。固相担体としては、核酸の固相反応に使用しうる担体であれば特に制限されないが、例えば、iモルホリノ核酸誘導体の合成に使用しうる試薬例えば、ジクロロメタン、アセトニトリル、テトラゾール、N-メチルイミダゾール、ピリジン、無水酢酸、ルチジン、トリフルオロ酢酸にほとんど溶解せず、iiモルホリノ核酸誘導体の合成に使用しうる試薬に対して化学的に安定であり、iii化学修飾ができ、iv望ましいモルホリノ核酸誘導体の装填ができ、v処理中にかかる高圧に耐える十分な強度をもち、vi一定の粒径範囲と分布であるものが望ましい。具体的には、膨潤性ポリスチレン例えば、アミノメチルポリスチレン樹脂1ジベンジルベンゼン架橋200~400メッシュ2.4~3.0mmol/g東京化成社製、AminomethylatedPolystyreneResinHCl[ジベンジルベンゼン1,100~200メッシュ]ペプチド研究所社製、非膨潤性ポリスチレン例えば、PrimerSupportGEHealthcare社製、PEG鎖結合型ポリスチレン例えば、NH2-PEGresin渡辺化学社製、TentaGelresin、定孔ガラスcontrolledporeglass;CPG例えば、CPG社製、オキサリル化-定孔ガラス例えば、Alulら,NucleicAcidsResearch,Vol.19,15271991を参照、TentaGel支持体-アミノポリエチレングリコール誘導体化支持体例えば、Wrightら,TetrahedronLetters,Vol.34,33731993を参照、Poros-ポリスチレン/ジビニルベンゼンのコポリマーを挙げることができる。リンカーとしては、通常核酸やモルホリノ核酸誘導体を連結するために使用される公知のものを用いることができるが、例えば、3-アミノプロピル、スクシニル、2,2’-ジエタノールスルホニル、ロングチェーンアルキルアミノLCAAを挙げることができる。本工程は、化合物IIに酸を作用させることにより実施することができる。本工程に使用しうる酸としては、例えば、トリフルオロ酢酸、ジクロロ酢酸又はトリクロロ酢酸を挙げることができる。酸の使用量としては、例えば、化合物II1モルに対して0.1モル当量~1000モル当量の範囲内が適当であり、好ましくは1モル当量~100モル当量の範囲内である。また、前記酸と一緒に、有機アミンを使用することができる。有機アミンとしては、特に限定されるものではないが、例えば、トリエチルアミンを挙げることができる。有機アミンの使用量は、例えば、酸1モルに対して、0.01モル当量~10モル当量の範囲内が適当であり、好ましくは、0.1モル当量~2モル当量の範囲内である。本工程において酸と有機アミンとの塩又は混合物を使用する場合には、例えば、トリフルオロ酢酸とトリエチルアミンの塩又は混合物を挙げることができ、より具体的には、トリフルオロ酢酸2当量に対してトリエチルアミン1当量を混合したものを挙げることができる。本工程に使用しうる酸は、0.1~30の範囲内の濃度になるように適当な溶媒で希釈して使用することもできる。溶媒としては、反応に関与しなければ特に限定されないが、例えば、ジクロロメタン、アセトニトリル、アルコール類エタノール、イソプロパノール、トリフルオロエタノールなど、水又はこれらの混合物を挙げることができる。上記反応における反応温度は、例えば、10°C~50°Cの範囲内が好ましく、より好ましくは、20°C~40°Cの範囲内であり、さらに好ましくは、25°C~35°Cの範囲内である。反応時間は、使用する酸の種類、反応温度によって異なるが、通常0.1分~24時間の範囲内が適当である。好ましくは、1分~5時間の範囲内である。また、本工程が終了した後、必要に応じて、系中に存在する酸を中和するために塩基を添加することができる。塩基としては、特に限定されないが、例えば、ジイソプロピルアミンが挙げられる。塩基は、0.1v/v~30v/vの範囲内の濃度になるように適当な溶媒で希釈して使用することもできる。本工程に用いる溶媒としては、反応に関与しなければ特に限定されないが、ジクロロメタン、アセトニトリル、アルコール類エタノール、イソプロパノール、トリフルオロエタノールなど、水又はこれらの混合物を挙げることができる。反応温度は、例えば、10°C~50°Cの範囲内が好ましく、より好ましくは、20°C~40°Cの範囲内であり、さらに好ましくは、25°C~35°Cの範囲内である。反応時間は、使用する塩基の種類、反応温度によって異なるが、通常0.1分~24時間の範囲内が適当であり、好ましくは、1分~5時間の範囲内である。なお、化合物IIにおいて、n=1であって、Lが基IVである、次の一般式IIaで表される化合物以下、化合物IIaというは、以下の方法に従って製造することができる。[式中、BP、T、リンカー、固相担体は、前記と同義である。]工程1:次の一般式Vで表される化合物にアシル化剤を作用させることによって、次の一般式VIで表される化合物以下、化合物VIという。を製造する工程。[式中、BP、T、リンカーは、前記と同義であり;R4は、水酸基、ハロゲン、又は、アミノを表す。]本工程は、化合物Vを出発原料として、公知のリンカーの導入反応により実施することができる。特に、次の一般式VIaで表される化合物は、化合物Vと無水コハク酸とを用いてエステル化反応として知られた方法を実施することにより製造することができる。[式中、BP、Tは、前記と同義である。]工程2:化合物VIに縮合剤等を作用させることによって、固相担体と反応させ、化合物IIaを製造する工程。[式中、BP、R4、T、リンカー、固相担体は、前記と同義である。]本工程は、化合物VIと固相担体とを用いて縮合反応として知られた方法により製造することができる。化合物IIにおいて、n=2~99であって、Lが基IVである、次の一般式IIa2で表される化合物は、化合物IIaを出発原料とし、本明細書に記載のPMOの製法にかかる工程A及び工程Bを所望の回数繰り返し実施することにより製造することができる。[式中、BP、R2、R3、T、リンカー、固相担体は、前記と同義であり;n’は、1~98を表す。]また、化合物IIにおいて、n=1であって、Lが水素である、次の一般式IIbで表される化合物は、例えば、国際公開公報第1991/009033号に記載の方法により製造することができる。[式中、BP、Tは、前記と同義である。]化合物IIにおいて、n=2~99であって、Lが水素である、次の一般式IIb2で表される化合物は、化合物IIbを出発原料とし、本明細書に記載のPMOの製法にかかる工程A及び工程Bを所望の回数繰り返し実施することにより製造することができる。[式中、BP、n’、R2、R3、Tは、前記と同義である。]また、化合物IIにおいて、n=1であって、Lがアシルである、次の一般式IIcで表される化合物は、化合物IIbに対してアシル化反応として知られた方法を実施することにより製造することができる。[式中、BP、Tは、前記と同義であり;R5は、アシルを表す。]化合物IIにおいて、n=2~99であって、Lがアシルである、次の一般式IIc2で表される化合物は、化合物IIcを出発原料とし、本明細書に記載のPMOの製法にかかる工程A及び工程Bを所望の回数繰り返し実施することにより製造することができる。[式中、BP、n’、R2、R3、R5、Tは、前記と同義である。]2工程B:化合物IIIに塩基存在下にモルホリノモノマー化合物を作用させることによって、次の一般式VIIで表される化合物以下、化合物VIIという。を製造する工程。[式中、各BP、L、n、R2、R3、Tは、前記と同義である。]本工程は、化合物IIIに塩基存在下にモルホリノモノマー化合物を作用させることにより実施することができる。モルホリノモノマー化合物としては、例えば、次の一般式VIIIで表される化合物を挙げることができる。[式中、BP、R2、R3、Tは前記と同義である。]本工程に使用しうる塩基としては、例えば、ジイソプロピルアミン、トリエチルアミン、又は、N-エチルモルホリンを挙げることができる。塩基の使用量としては、例えば、化合物III1モルに対して、1モル当量~1000モル当量の範囲内が適当であり、好ましくは10モル当量~100モル当量の範囲内である。本工程に使用しうるモルホリノモノマー化合物および塩基は、0.1~30の濃度になるように適当な溶媒で希釈して使用することもできる。溶媒としては、反応に関与しなければ特に限定されないが、例えば、N,N-ジメチルイミダゾリドン、N-メチルピペリドン、DMF、ジクロロメタン、アセトニトリル、テロラヒドロフラン、又はこれらの混合物を挙げることができる。反応温度は、例えば、0°C~100°Cの範囲内が好ましく、より好ましくは、10°C~50°Cの範囲内である。反応時間は、使用する塩基の種類、反応温度によって異なるが、通常1分~48時間の範囲内が適当であり、好ましくは、30分~24時間の範囲内である。さらに本工程の終了後、必要に応じて、アシル化剤を添加することができる。アシル化剤としては、例えば、無水酢酸、酢酸クロライド、フェノキシ酢酸無水物を挙げることができる。アシル化剤は、例えば、0.1~30の範囲内の濃度になるように適当な溶媒で希釈して使用することもできる。溶媒としては、反応に関与しなければ特に限定されないが、例えば、ジクロロメタン、アセトニトリル、アルコール類エタノール、イソプロパノール、トリフルオロエタノールなど、水又はこれらの混合物を挙げることができる。また、必要であれば、アシル化剤と一緒に、例えば、ピリジン、ルチジン、コリジン、トリエチルアミン、ジイソプロピルエチルアミン、N-エチルモルホリン等の塩基を使用することができる。アシル化剤の使用量としては、0.1モル当量~10000モル当量の範囲内が好ましく、1モル当量~1000モル当量の範囲内がより好ましい。塩基の使用量としては、例えば、アシル化剤1モルに対して、0.1モル当量~100モル当量の範囲内が適当であり、好ましくは1モル当量~10モル当量の範囲内である。本反応の反応温度は、10°C~50°Cの範囲内が好ましく、より好ましくは、10°C~50°Cの範囲内が好ましく、より好ましくは、20°C~40°Cの範囲内であり、さらに好ましくは、25°C~35°Cの範囲内である。反応時間は、例えば、使用するアシル化剤の種類、反応温度によって異なるが、通常0.1分~24時間の範囲内が適当であり、好ましくは、1分から5時間の範囲内である。3工程C:工程Bにおいて製造される化合物VIIにおいて、脱保護剤を用いて保護基を脱離し、一般式IXで表される化合物を製造する工程。[式中、Base、BP、L、n、R2、R3、Tは、前記と同義である。]本工程は、化合物VIIに脱保護剤を作用させることにより実施することができる。脱保護剤としては、例えば、濃アンモニア水、メチルアミンを挙げることができる。本工程に使用しうる脱保護剤は、例えば、水、メタノール、エタノール、イソプロピルアルコール、アセトニトリル、テトラヒドロフラン、DMF、N,N-ジメチルイミダゾリドン、N-メチルピペリドン又はこれらの混合溶媒で希釈して使用することもできる。なかでも、エタノールが好ましい。脱保護剤の使用量としては、例えば、化合物VII1モルに対して、例えば、1モル当量~100000モル当量の範囲内が適当であり、好ましくは10モル当量~1000モル当量の範囲内である。反応温度は、例えば、15°C~75°Cの範囲内が適当であり、好ましくは40°C~70°Cの範囲内であり、より好ましくは50°C~60°Cの範囲内である。脱保護反応時間は、化合物VIIの種類、反応温度等によって異なるが、10分~30時間の範囲内が適当であり、好ましくは30分~24時間の範囲内であり、より好ましくは5時間~20時間の範囲内である。4工程D:工程Cにおいて製造される化合物IXに酸を作用させることによって、PMOIを製造する工程。[式中、Base、n、R2、R3、Tは、前記と同義である。]本工程は、化合物IXに酸を加えることによって実施することができる。本工程において使用しうる酸としては、例えば、トリクロロ酢酸、ジクロロ酢酸、酢酸、リン酸及び塩酸等を挙げることができる。酸の使用量としては、例えば、溶液のpHが0.1~4.0の範囲内になるように使用するのが適当であり、より好ましくは1.0~3.0の範囲内になるように使用する。溶媒としては、反応に関与しなければ特に限定されないが、例えば、アセトニトリル、水、又はこれらの混合溶媒を挙げることができる。反応温度は、10°C~50°Cの範囲内が好ましく、より好ましくは、20°C~40°Cの範囲内であり、さらに好ましくは、25°C~35°Cの範囲内である。脱保護反応時間は、化合物IXの種類、反応温度等によって異なるが、0.1分~5時間の範囲内が適当であり、好ましくは1分~1時間の範囲内であり、より好ましくは1分~30分の範囲内である。PMOIは、本工程で得られた反応混合物から通常の分離精製手段、例えば、抽出、濃縮、中和、濾過、遠心分離、再結晶、C8からC18の逆相カラムクロマトグラフィー、陽イオン交換カラムクロマトグラフィー、陰イオン交換カラムクロマトグラフィー、ゲルろ過カラムクロマトグラフィー、高速液体クロマトグラフィー、透析、限界ろ過などの手段を単独若しくは組み合わせて用いることにより得ることができ、所望のPMOIを単離精製することができる例えば、国際公開公報WO1991/09033を参照。逆相クロマトグラフィーを用いてPMOIを精製する場合には、溶出溶媒として、例えば20mMのトリエチルアミン/酢酸緩衝液とアセトニトリルの混合溶液を使用することができる。また、イオン交換クロマトグラフィーを用いてPMOIを精製する場合には、例えば、1Mの食塩水と10mMの水酸化ナトリウム水溶液の混合溶液を使用することができる。ペプチド核酸は、下記一般式で表される基を構成単位とする本発明のオリゴマーである。式中、Baseは、前記と同義である。ペプチド核酸は、例えば、以下の文献に従って製造することができる。1P.E.Nielsen,M.Egholm,R.H.Berg,O.Buchardt,Science,254,149719912M.Egholm,O.Buchardt,P.E.Nielsen,R.H.Berg,Jacs.,114,189519923K.L.Dueholm,M.Egholm,C.Behrens,L.Christensen,H.F.Hansen,T.Vulpius,K.H.Petersen,R.H.Berg,P.E.Nielsen,O.Buchardt,J.Org.Chem.,59,576719944L.Christensen,R.Fitzpatrick,B.Gildea,K.H.Petersen,H.F.Hansen,T.Koch,M.Egholm,O.Buchardt,P.E.Nielsen,J.Coull,R.H.Berg,J.Pept.Sci.,1,17519955T.Koch,H.F.Hansen,P.Andersen,T.Larsen,H.G.Batz,K.Otteson,H.Orum,J.Pept.Res.,49,801997また、本発明のオリゴマーは、5’末端が、下記化学式1~3のいずれかの基であってもよい。好ましくは3-OHである。以下、上記1、2及び3で示される基を、それぞれ基1、基2及び基3と呼ぶ。2.医薬組成物本発明のオリゴマーは、従来技術に係るアンチセンスオリゴマーと比較して、高効率にエクソン53のスキッピングを可能にする。従って、本発明のオリゴマーを含む医薬組成物をDMD患者に投与することにより、高効率に筋ジストロフィーの症状を緩和することができると予測される。例えば、本発明のオリゴマーを含む医薬組成物を用いる場合、従来技術に係るオリゴマーと比べて少量の投与量でも同程度の治療効果を得られるため、副作用を軽減することができ、かつ経済的である。そこで、別の実施態様として、本発明のオリゴマー、その医薬的に許容可能な塩又は水和物を有効成分とする、筋ジストロフィー治療用医薬組成物以下、本発明の組成物というを提供する。本発明の組成物に含まれる本発明のオリゴマーの医薬的に許容可能な塩の例としては、ナトリウム塩、カリウム塩、リチウム塩のようなアルカリ金属塩、カルシウム塩、マグネシウム塩のようなアルカリ土類金属塩;アルミニウム塩、鉄塩、亜鉛塩、銅塩、ニッケル塩、コバルト塩などの金属塩;アンモニウム塩;t-オクチルアミン塩、ジベンジルアミン塩、モルホリン塩、グルコサミン塩、フェニルグリシンアルキルエステル塩、エチレンジアミン塩、N-メチルグルカミン塩、グアニジン塩、ジエチルアミン塩、トリエチルアミン塩、ジシクロヘキシルアミン塩、N,N′-ジベンジルエチレンジアミン塩、クロロプロカイン塩、プロカイン塩、ジエタノールアミン塩、N-ベンジル-フェネチルアミン塩、ピペラジン塩、テトラメチルアンモニウム塩、トリスヒドロキシメチルアミノメタン塩のような有機アミン塩;弗化水素酸塩、塩酸塩、臭化水素酸塩、沃化水素酸塩のようなハロゲン化水素酸塩;硝酸塩、過塩素酸塩、硫酸塩、リン酸塩などの無機酸塩;メタンスルホン酸塩、トリフルオロメタンスルホン酸塩、エタンスルホン酸塩のような低級アルカンスルホン酸塩;ベンゼンスルホン酸塩、p-トルエンスルホン酸塩のようなアリールスルホン酸塩;酢酸塩、りんご酸塩、フマール酸塩、コハク酸塩、クエン酸塩、酒石酸塩、シュウ酸塩、マレイン酸塩などの有機酸塩;グリシン塩、リジン塩、アルギニン塩、オルニチン塩、グルタミン酸塩、アスパラギン酸塩のようなアミノ酸塩などが挙げられる。これらの塩は、公知の方法で製造することができる。あるいは、本発明の組成物に含まれる本発明のオリゴマーは、その水和物の形態にあってもよい。本発明の組成物の投与形態は、医薬的に許容可能な投与形態であれば特に制限されず、治療方法に応じて選択することができるが、筋組織への送達容易性の観点から、静脈内投与、動脈内投与、筋肉内投与、皮下投与、経口投与、組織内投与、経皮投与等が好ましい。また、本発明の組成物が取り得る剤型としては、特に制限されないが、例えば、各種の注射剤、経口剤、点滴剤、吸入剤、軟膏剤、ローション剤等を挙げることができる。本発明のオリゴマーを筋ジストロフィー患者に投与する場合、本発明の組成物は、該オリゴマーの筋組織への送達を促進する担体を含むことが好ましい。このような担体は、医薬的に許容可能なものであれば特に制限されず、その例として、カチオン性リポソーム、カチオン性ポリマー等のカチオン性担体、またはウイルスエンベロープを利用した担体を挙げることができる。カチオン性リポソームとしては、例えば、2-O-2-ジエチルアミノエチルカルバモイル-1,3-O-ジオレオイルグリセロールとリン脂質とを必須構成成分として形成されるリポソーム以下、リポソームAという、オリゴフェクトアミン登録商標Invitrogen社製、リポフェクチン登録商標Invitrogen社製、リポフェクトアミン登録商標Invitrogen社製、Lipofectamine2000登録商標Invitrogen社製、DMRIE-C登録商標Invitrogen社製、GeneSilencer登録商標GeneTherapySystems社製、TransMessenger登録商標QIAGEN社製、TransITTKO登録商標Mirus社製、NucleofectorIILonzaを挙げることができる。それらの中で、リポソームAが好ましい。カチオン性ポリマーとしては、例えば、JetSI登録商標Qbiogene社製、Jet-PEI登録商標ポリエチレンイミン、Qbiogene社製を挙げることができる。ウイルスエンベロープを利用した担体としては、例えば、GenomeOne登録商標HVJ-Eリポソーム、石原産業社製を挙げることができる。あるいは、特許2924179号に記載の医薬デバイス、特許再公表公報第2006/129594号及び特許再公表公報第2008/096690号に記載のカチオン性担体を用いることもできる。本発明の組成物に含まれる本発明のオリゴマーの濃度は、担体の種類等によって異なるが、0.1nM~100μMの範囲内が適当であり、1nM~10μMの範囲内が好ましく、10nM~1μMの範囲内がより好ましい。また、本発明の組成物に含まれる本発明のオリゴマーと担体との重量比担体/本発明のオリゴマーは、該オリゴマーの性質及び該担体の種類等によって異なるが、0.1~100の範囲内が適当であり、1~50の範囲内が好ましく、10~20の範囲内がより好ましい。本発明の組成物には、本発明のオリゴマーと上述した担体以外に、任意に医薬的に許容可能な添加剤を配合することができる。かかる添加剤として、例えば、乳化補助剤例えば、炭素数6~22の脂肪酸やその医薬的に許容可能な塩、アルブミン、デキストラン、安定化剤例えば、コレステロール、ホスファチジン酸、等張化剤例えば、塩化ナトリウム、グルコース、マルトース、ラクトース、スクロース、トレハロース、pH調整剤例えば、塩酸、硫酸、リン酸、酢酸、水酸化ナトリウム、水酸化カリウム、トリエタノールアミンを挙げることができる。これらを一種又は二種以上使用することができる。本発明の組成物中の当該添加剤の含有量は、90重量以下が適当であり、70重量以下が好ましく、50重量以下がより好ましい。本発明の組成物は、担体の分散液に本発明のオリゴマーを加え、適当に攪拌することにより調製することができる。また、添加剤は、本発明のオリゴマーの添加前でも添加後でも適当な工程で添加することができる。本発明のオリゴマーを添加させる際に用い得る水性溶媒としては、医薬的に許容可能なものであれば特に制限されず、例えば、注射用水、注射用蒸留水、生理食塩水等の電解質液、ブドウ糖液、マルトース液等の糖液を挙げることができる。また、かかる場合のpH及び温度等の条件は、当業者が適宜選択することができる。本発明の組成物は、例えば、液剤やその凍結乾燥製剤とすることができる。当該凍結乾燥製剤は、常法により、液剤の形態を有している本発明の組成物を凍結乾燥処理することにより調製することができる。例えば、液剤の形態を有している本発明の組成物を適当な滅菌を行った後、所定量をバイアル瓶に分注し、約-40~-20°Cの条件で予備凍結を2時間程度行い、約0~10°Cで減圧下に一次乾燥を行い、次いで、約15~25°Cで減圧下に二次乾燥して凍結乾燥することができる。そして、一般的にはバイアル内部を窒素ガスで置換し、打栓して本発明の組成物の凍結乾燥製剤を得ることができる。本発明の組成物の凍結乾燥製剤は、一般には任意の適当な溶液再溶解液の添加によって再溶解し使用することができる。このような再溶解液としては、注射用水、生理食塩水、その他一般輸液を挙げることができる。この再溶解液の液量は、用途等によって異なり特に制限されないが、凍結乾燥前の液量の0.5~2倍量、又は500mL以下が適当である。本発明の組成物を投与する際の用量としては、含有される本発明のオリゴマーの種類、剤形、年齢や体重等の患者の状態、投与経路、疾患の性質と程度を考慮した上で調製することが望ましいが、成人に対して本発明のオリゴマーの量として、1日当たり0.1mg~10g/ヒトの範囲内が、好ましくは1mg~1g/ヒトの範囲内が一般的である。この数値は標的とする疾患の種類、投与形態、標的分子によっても異なる場合がある。従って、場合によってはこれ以下でも十分であるし、また逆にこれ以上の用量を必要とするときもある。また1日1回から数回の投与又は1日から数日間の間隔で投与することができる。本発明の組成物の別の態様として、本発明のオリゴヌクレオチドを発現し得るベクターと上述した担体とを含む医薬組成物を挙げることができる。かかる発現ベクターは、複数の本発明のオリゴヌクレオチドを発現し得るものであってもよい。当該組成物には、本発明のオリゴマーを含有する本発明の組成物と同様に、医薬的に許容可能な添加剤を添加することができる。当該組成物中に含まれる発現ベクターの濃度は、担体の種類等によって異なるが、0.1nM~100μMの範囲内が適当であり、1nM~10μMの範囲内が好ましく、10nM~1μMの範囲内がより好ましい。当該組成物中に含まれる発現ベクターと担体との重量比担体/発現ベクターは、発現ベクターの性質、担体の種類等によって異なるが、0.1~100の範囲内が適当であり、1~50の範囲内が好ましく、10~20の範囲内がより好ましい。また、当該組成物中に含まれる担体の含有量は、本発明のオリゴマーを含有する本発明の組成物の場合と同様であり、その調製方法等に関しても、本発明の組成物の場合と同様である。以下に、実施例及び試験例を掲げて、本発明をさらに詳しく説明するが、本発明は実施例に示される範囲に限定されるものではない。[参考例1]アミノメチルポリスチレン樹脂に担持された4-{[2S,6R-6-4-ベンズアミド-2-オキソピリミジン-1-イル-4-トリチルモルホリン-2-イル]メトキシ}-4-オキソブタン酸工程1:4-{[2S,6R-6-4-ベンズアミド-2-オキソピリミジン-12H-イル-4-トリチルモルホリン-2-イル]メトキシ}-4-オキソブタン酸の製造アルゴン雰囲気下、N-{1-[2R,6S-6-ヒドロキシメチル-4-トリチルモルホリン-2-イル]-2-オキソ-1,2-ジヒドロピリミジン-4-イル}ベンズアミド22.0gと4-ジメチルアミノピリジン4-DMAP7.04gをジクロロメタン269mLに懸濁し、無水コハク酸5.76gを加え、室温で3時間撹拌した。反応液にメタノール40mLを加え、減圧濃縮した。残渣に酢酸エチルと0.5Mのリン酸二水素カリウム水溶液を用いて抽出操作を行った。得られた有機層を0.5Mのリン酸二水素カリウム水溶液、水、飽和食塩水の順で洗浄した。得られた有機層を硫酸ナトリウムで乾燥し、減圧濃縮し、25.9gの目的物を得た。工程2:アミノメチルポリスチレン樹脂に担持された4-{[2S,6R-6-4-ベンズアミド-2-オキソピリミジン-1-イル-4-トリチルモルホリン-2-イル]メトキシ}-4-オキソブタン酸の製造4-{[2S,6R-6-4-ベンズアミド-2-オキソピリミジン-12H-イル-4-トリチルモルホリン-2-イル]メトキシ}-4-オキソブタン酸23.5gをピリジン脱水336mLに溶解し、4-DMAP4.28g、1-エチル-3‐3-ジメチルアミノプロピルカルボジイミド塩酸塩40.3gを加えた。次いで、アミノメチルポリスチレン樹脂1DVB架橋東京化成工業社製、A154325.0g、トリエチルアミン24mLを加え、室温で4日間振とうした。反応後、樹脂をろ取した。得られた樹脂をピリジン、メタノール、ジクロロメタンの順で洗浄し、減圧乾燥した。得られた樹脂にテトラヒドロフラン脱水150mL、無水酢酸15mL、2,6-ルチジン15mLを加え、室温で2時間振とうした。樹脂をろ取し、ピリジン、メタノール、ジクロロメタンの順で洗浄し、減圧乾燥し、33.7gの目的物を得た。当該目的物のローディング量は、公知の方法を用いて、樹脂1g当たりのトリチルのモル量を409nmにおけるUV吸光度を測定することにより決定した。樹脂のローディング量は、397.4μmol/gであった。UV測定条件機器:U-2910日立製作所溶媒:メタンスルホン酸波長:265nmε値:45000[参考例2]アミノメチルポリスチレン樹脂に担持された4-オキソ-4-{[2S,6R-6-6-オキソ-2-[2-フェノキシアセタミド]-1H-プリン-9-イル-4-トリチルモルホリン-2-イル]メトキシ}ブタン酸工程1:N2-フェノキシアセチルグアノシンの製造グアノシン100gを80°Cで減圧下、24時間乾燥した。ピリジン脱水500mL、ジクロロメタン脱水500mLを加え、アルゴン雰囲気下、0°Cにてクロロトリメチルシラン401mLを滴下し室温で3時間撹拌した。再度氷冷し、フェノキシアセチルクロライド66.3gを滴下し、氷冷下、更に3時間撹拌した。反応液にメタノール500mlを加え、室温で終夜撹拌後、減圧下溶媒を留去した。残渣にメタノール500mLを加え、減圧下濃縮することを3回行った。残渣に水4Lを加え氷冷下1時間撹拌し、析出物をろ取した。このものを、水、次いで、冷メタノールで洗浄し、乾燥して目的化合物を150.2g得た収率:102参考:Org.Lett.2004,Vol.6,No.15,2555-2557。工程2:N-{9-[2R,6S-6-ヒドロキシメチル-4-モルホリン-2-イル]-6-オキソ-6,9-ジヒドロ-1H-プリン-2-イル}-2-フェノキシアセタミドp-トルエンスルホン酸塩工程1で得られた化合物30gをメタノール480mLに懸濁し、氷冷下、2N塩酸130mLを加えた。次いで、四ほう酸アンモニウム4水和物56.8g、過ヨウ素酸ナトリウム16.2gをこの順で加え、室温で3時間撹拌した。反応液を氷冷し、不溶物をろ過して除き、これをメタノール100mLで洗浄した。ろ液と洗浄液を合わせて氷冷し、2-ピコリンボラン11.52gを加えて20分間撹拌後、p-トルエンスルホン酸1水和物54.6gをゆっくり加えて、4°Cで終夜撹拌した。析出物をろ取し、冷メタノール500mLで洗浄後、乾燥して目的化合物を17.7g得た収率:43.3。1HNMRδ,DMSO-d6:9.9-9.22H,br、8.351H,s、7.552H,m、7.352H,m、7.102H,d,J=7.82Hz、7.003H,m、5.951H,dd,J=10.64,2.42Hz、4.852H,s、4.001H,m、3.90-3.602H,m、3.50-3.205H,m、2.901H,m、2.253H,s工程3:N-{9-[2R,6S-6-ヒドロキシメチル-4-トリチルモルホリン-2-イル]-6-オキソ-6,9-ジヒドロ-1H-プリン-2-イル}-2-フェノキシアセタミドの製造工程2で得られた化合物2.0gをジクロロメタン30mLに懸濁し、氷冷下、トリエチルアミン13.9g、トリチルクロリド18.3gを加えて、室温で1時間撹拌した。反応液を飽和重曹水、次いで水で洗浄後乾燥し、有機層を減圧濃縮した。残渣に0.2Mクエン酸ナトリウム緩衝液pH3/メタノール1:4v/v40mLを加えて撹拌し、次いで水40mLを加えて氷冷下1時間撹拌した。これをろ取し、冷メタノールで洗浄、乾燥して目的化合物を1.84g得た収率:82.0。工程4:アミノメチルポリスチレン樹脂に担持された4-オキソ-4-{[2S,6R-6-6-オキソ-2-[2-フェノキシアセタミド]-1H-プリン-9-イル-4-トリチルモルホリン-2-イル]メトキシ}ブタン酸の製造参考例1と同様の方法で標記化合物を製造した。但し、参考例1の工程1で用いたN-{1-[2R,6S-6-ヒドロキシメチル-4-トリチルモルホリン-2-イル]-2-オキソ-1,2-ジヒドロピリミジン-4-イル}ベンズアミドの代わりに、本工程では、N-{9-[2R,6S-6-ヒドロキシメチル-4-トリチルモルホリン-2-イル]-6-オキソ-6,9-ジヒドロ-1H-プリン-2-イル}-2-フェノキシアセタミドを使用した。[参考例3]アミノメチルポリスチレン樹脂に担持された4-{[2S,6R-6-5-メチル-2,4-ジオキソ-3,4-ジヒドロピリミジン-1-イル-4-トリチルモルホリン-2-イル]メトキシ}-4-オキソブタン酸参考例1と同様の方法で標記化合物を製造した。但し、参考例1の工程1で用いたN-{1-[2R,6S-6-ヒドロキシメチル-4-トリチルモルホリン-2-イル]-2-オキソ-1,2-ジヒドロピリミジン-4-イル}ベンズアミドの代わりに、本工程では、1-[2R,6S-6-ヒドロキシメチル-4-トリチルモルホリン-2-イル]-5-メチルピリミジン-2,41H,3H-ジオンを使用した。[参考例4]アミノメチルポリスチレン樹脂に担持された1,12-ジオキソ-1-4-トリチルピペラジン-1-イル-2,5,8,11-テトラオキサ-15-ペンタデカン酸参考例1と同様の方法で標記化合物を製造した。但し、参考例1の工程1で用いたN-{1-[2R,6S-6-ヒドロキシメチル-4-トリチルモルホリン-2-イル]-2-オキソ-1,2-ジヒドロピリミジン-4-イル}ベンズアミドの代わりに、本工程では、2-[2-2-ヒドロキシエトキシエトキシ]エチル4-トリチルピペラジン-1-カルボン酸国際公開公報第2009/064471号に記載の化合物を使用した。以下の実施例1~12、比較例1~3の記載に従い、表2PMONo.1-11,13-16に示す各種PMOを合成した。合成したPMOを注射用水大塚製薬工場社製で溶解した。なお、PMONo.12はジーンツールズ社から購入した。[実施例1]PMONo.8アミノメチルポリスチレン樹脂に担持された4-{[2S,6R-6-4-ベンズアミド-2-オキソピリミジン-12H-イル-4-トリチルモルホリン-2-イル]メトキシ}-4-オキソブタン酸参考例12g800μmolを反応槽に移し入れ、ジクロロメタン30mLを添加し、30分間静置した。さらに、ジクロロメタン30mLで2回洗浄した後、下記合成サイクルを開始した。標記化合物の塩基配列になるよう、各サイクルにおいて所望のモルホリノモノマー化合物を添加した。なお、デブロック溶液としては、トリフルオロ酢酸2当量とトリエチルアミン1当量の混合物を3w/vになるように、1v/vのエタノールと10v/vの2,2,2-トリフルオロエタノールを含有するジクロロメタン溶液で溶解したものを用いた。中和溶液としては、N,N-ジイソプロピルエチルアミンを5v/vになるように、25v/vの2-プロパノールを含有するジクロロメタン溶液で溶解したものを用いた。カップリング溶液Aとしては、モルホリノモノマー化合物を0.15Mになるように、10v/vのN,N-ジイソプロピルエチルアミンを含有する1,3-ジメチル-2-イミダゾリジノンで溶解したものを用いた。カップリング溶液Bとしては、N,N-ジイソプロピルエチルアミンを10v/vになるように、1,3-ジメチル-2-イミダゾリジノンで溶解したものを用いた。キャッピング溶液としては、ジクロロメタンに対して20v/vの無水酢酸と30v/vの2,6-ルチジンを溶解したものを使用した。上記で合成したPMOが担持されたアミノメチルポリスチレン樹脂を反応容器から回収し、2時間以上室温で減圧乾燥した。乾燥したアミノメチルポリスチレン樹脂に担持されたPMOを反応容器に入れ、28アンモニア水-エタノール1/4200mLを加え、55°Cで15時間撹拌した。アミノメチルポリスチレン樹脂をろ別し、水-エタノール1/450mLで洗浄した。得られたろ液を減圧濃縮した。得られた残渣を20mMの酢酸-トリエチルアミン緩衝液TEAA緩衝液とアセトニトリルの混合溶媒4/1100mLに溶解し、メンブレンフィルターでろ過した。得られたろ液を逆相HPLCにて精製した。使用した条件は、以下の通りである。各フラクションを分析して、アセトニトリル-水1/1100mLで目的物を回収し、エタノール200mLを添加し、減圧濃縮した。さらに、減圧乾燥し、白色固体を得た。得られた固体に10mMのリン酸水溶液300mLを加え、懸濁させた。2Mのリン酸水溶液10mLを加え、15分間攪拌した。さらに、2Mの水酸化ナトリウム水溶液15mLを加えて中和した。さらに、2Mの水酸化ナトリウム水溶液15mLを加えてアルカリ性とし、メンブレンフィルター0.45μmでろ過した。10mMの水酸化ナトリウム水溶液100mLで洗いこみ、水溶液として目的物を得た。得られた目的物を含有する水溶液を陰イオン交換樹脂カラムで精製した。使用した条件は下記の通りである。各フラクションを分析HPLCし、目的物を水溶液として得た。得られた水溶液に0.1Mのリン酸緩衝液pH6.0225mLを添加し中和した。メンブレンフィルター0.45μmでろ過した。次いで、下記条件で限外ろ過を行い脱塩した。ろ液を濃縮し、約250mLの水溶液を得た。得られた水溶液をメンブレンフィルター0.45μmでろ過した。得られた水溶液を凍結乾燥して、白色綿状固体として1.5gの目的化合物を得た。ESI-TOF-MS計算値:6924.82測定値:6923.54[実施例2]PMO.No.1実施例1と同様の方法に従って、標記化合物を製造した。MALDI-TOF-MS計算値:8291.96測定値:8296.24[実施例3]PMO.No.2実施例1と同様の方法に従って、標記化合物を製造した。ESI-TOF-MS計算値:7310.13測定値:7309.23[実施例4]PMO.No.3実施例1と同様の方法に従って、標記化合物を製造した。ESI-TOF-MS計算値:8270.94測定値:8270.55[実施例5]PMO.No.4実施例1と同様の方法に従って、標記化合物を製造した。但し、出発原料として、アミノメチルポリスチレン樹脂に担持された4-2S,6R-6-5-メチル-2,4-ジオキソ-3,4-ジヒドロピリミジン-12H-イル-4-トリチルモルホリン-2-イルメトキシ-4-オキソブタン酸参考例3を使用した。ESI-TOF-MS計算値:7310.13測定値:7310.17[実施例6]PMO.No.5実施例1と同様の方法に従って、標記化合物を製造した。但し、出発原料として、アミノメチルポリスチレン樹脂に担持された4-2S,6R-6-5-メチル-2,4-ジオキソ-3,4-ジヒドロピリミジン-12H-イル-4-トリチルモルホリン-2-イルメトキシ-4-オキソブタン酸参考例3を使用した。ESI-TOF-MS計算値:8270.94測定値:8270.20[実施例7]PMO.No.6実施例1と同様の方法に従って、標記化合物を製造した。ESI-TOF-MS計算値:5964.01測定値:5963.68[実施例8]PMO.No.7実施例1と同様の方法に従って、標記化合物を製造した。ESI-TOF-MS計算値:6609.55測定値:6608.85[実施例9]PMO.No.9実施例1と同様の方法に従って、標記化合物を製造した。但し、出発原料として、アミノメチルポリスチレン樹脂に担持された4-オキソ-4-2S,6R-6-6-オキソ-2-2-フェノキシアセタミド-1H-プリン-96H-イル-4-トリチルモルホリン-2-イルメトキシブタン酸参考例2を使用した。ESI-TOF-MS計算値:7280.11測定値:7279.42[実施例10]PMO.No.10実施例1と同様の方法に従って、標記化合物を製造した。但し、出発原料として、アミノメチルポリスチレン樹脂に担持された4-オキソ-4-2S,6R-6-6-オキソ-2-2-フェノキシアセタミド-1H-プリン-96H-イル-4-トリチルモルホリン-2-イルメトキシブタン酸参考例2を使用した。ESI-TOF-MS計算値:8295.95測定値:8295.91[実施例11]PMO.No.13実施例1と同様の方法に従って、標記化合物を製造した。但し、出発原料としてアミノメチルポリスチレン樹脂に担持された1,12-ジオキソ-1-4-トリチルピペラジン-1-イル-2,5,8,11-テトラオキサ-15-ペンタデカン酸参考例4を使用した。ESI-TOF-MS計算値:7276.15測定値:7276.69[実施例12]PMO.No.14実施例1と同様の方法に従って、標記化合物を製造した。但し、出発原料としてアミノメチルポリスチレン樹脂に担持された1,12-ジオキソ-1-4-トリチルピペラジン-1-イル-2,5,8,11-テトラオキサ-15-ペンタデカン酸参考例4を使用した。ESI-TOF-MS計算値:8622.27測定値:8622.29[比較例1]PMO.No.11実施例1と同様の方法に従って、標記化合物を製造した。ESI-TOF-MS計算値:10274.63測定値:10273.71[比較例2]PMO.No.15実施例1と同様の方法に従って、標記化合物を製造した。ESI-TOF-MS計算値:9941.33測定値:9940.77[比較例3]PMO.No.16実施例1と同様の方法に従って、標記化合物を製造した。ESI-TOF-MS計算値:8238.94測定値:8238.69[試験例1]InvitroアッセイRD細胞ヒト横紋筋肉腫細胞株4×105個に対して、PMONo.1~8の本発明のオリゴマー及びPMONo.11のアンチセンスオリゴマー10μMをAmaxaCellLineNucleofectorKitLを用いてNucleofectorIILonzaにより導入した。プログラムはT-030を用いた。導入後、細胞を、10ウシ胎児血清FCSインビトロジェン社製を含むEagle′sminimalessentialmediumEMEM培地シグマ社製、以下同じ2mL中、37°C、5CO2条件下で一晩培養した。細胞をPBSニッスイ社製、以下同じで2回洗浄した後、ISOGENニッポンジーン社製500μlを細胞に添加し、数分間室温に放置して細胞を溶解させ、該溶解物をEppendorfチューブに回収した。ISOGENに添付のプロトコールに従ってtotalRNAを抽出した。抽出したtotalRNAの濃度はNanoDropND-1000エルエムエス社製を用いて測定した。抽出したtotalRNA400ngに対し、TitanOneTubeRT-PCRKitロシュ社製を用いてOne-StepRT-PCRを行った。キットに添付のプロトコールに従って、反応液を調製した。サーマルサイクラーはPTC-100MJResearch社製を用いた。用いたRT-PCRのプログラムは、以下の通りである。50°C、30分間:逆転写反応94°C、2分間:熱変性[94°C、10秒間;58°C、30秒間;68°C、45秒間]x30サイクル:PCR増幅68°C、7分間:ポリメラーゼの熱失活RT-PCRに使用したフォワードプライマーとリバースプライマーの塩基配列は以下の通りである。次に、上記RT-PCRの増幅産物に対し、TaqDNAPolymeraseロシュ社製を用いてnestedPCRを行った。用いたPCRプログラムは、以下の通りである。94°C、2分間:熱変性[94°C、15秒間;58°C、30秒間;68°C、45秒間]x30サイクル:PCR増幅68°C、7分間:ポリメラーゼの熱失活上記nestedPCRに使用したフォワードプライマーとリバースプライマーの塩基配列は以下の通りである。上記nestedPCRの反応産物1μlをBioanalyzerアジレント社製を用いて解析した。エクソン53がスキップしたバンドのポリヌクレオチド量Aと、エクソン53がスキップしなかったバンドのポリヌクレオチド量Bを測定した。これらA及びBの測定値に基づき、以下の式に従って、スキッピング効率を求めた。スキッピング効率=A/ABx100実験結果結果を図1に示す。本実験により、PMONo.1~8の本発明のオリゴマーは、いずれもPMONo.11のアンチセンスオリゴマーと比べて、著しく高い効率でエクソン53をスキッピングさせることが判明した。特に、PMONo.3及び8の本発明のオリゴマーは、PMONo.11のアンチセンスオリゴマーと比べて、4倍以上高いエクソンスキッピング効率を示す。[試験例2]ヒト線維芽細胞を用いたInvitroアッセイZsGreen1共発現レトロウイルスベクターによりTIG-119細胞ヒト正常組織由来線維芽細胞、医薬基盤研究所又は5017細胞ヒトDMD患者由来線維芽細胞、CoriellInstituteforMedicalResearchにヒトmyoD遺伝子配列番号44を導入した。4から5日間インキュベートした後に、FACSによりZsGreen陽性のMyoD転換線維芽細胞を回収し、5×104個/cm2になるように12穴プレートに播種した。増殖培地は10FCS及び1Penicillin/StreptomycinP/Sシグマアルドリッチ社を含むDulbecco′sModifiedEagleMedium:NutrientMixtureF-12DMEMF-12インビトロジェン社を1mL使用した。24時間後に分化培地2ウマ血清インビトロジェン社、1P/S及びITSLiquidMediaSupplementシグマ社含有DMEM/F-12に交換した。2、3日ごとに培地交換を行い12から14日間インキュベートし、筋管細胞に分化させた。その後、分化培地を6μMのEndo-Porterジーンツール社含有分化培地に交換し、終濃度10μMになるようにモルホリノオリゴマーを添加した。48時間インキュベート後に、TRIzolインビトロジェン社製により、細胞からtotalRNAを抽出した。抽出したtotalRNA50ngに対し、QIAGENOneStepRT-PCRKitを用いてRT-PCRを行った。添付のプロトコールに従って、反応液を調製した。サーマルサイクラーはiCyclerBio-Rad社製を用いた。用いたRT-PCRのプログラムは、以下の通りである。50°C、30分間:逆転写反応95°C、15分間:熱変性[94°C、1分間;60°C、1分間;72°C、1分間]x35サイクル:PCR増幅72°C、7分間:ポリメラーゼの熱失活プライマーはhEX51F及びhEX55Rを使用した。上記RT-PCR反応の反応産物を2アガロースゲル電気泳動によって分離し、GeneFlashSyngene社によりゲル写真を撮影した。ImageJアメリカ国立衛生研究所製により、エクソン53がスキップしたバンドのポリヌクレオチド量Aと、エクソン53がスキップしなかったバンドのポリヌクレオチド量Bを測定した。これらA及びBの測定値に基づき、以下の式に従って、スキッピング効率を求めた。スキッピング効率=A/ABx100実験結果結果を図2及び図3に示す。本実験により、PMONo.3、8及び9の本発明のオリゴマー図2は、TIG-119細胞において、いずれもPMONo.12のアンチセンスオリゴマーと比べて、高い効率でエクソン53をスキッピングさせることが判明した図2。特に、PMONo.3及び8の本発明のオリゴマーは、PMONo.12のアンチセンスオリゴマーと比べて、2倍以上高いエクソンスキッピング効率を示す図2。また、本実験により、PMONo.3及び8~10の本発明のオリゴマー図3は、5017細胞において、いずれもPMONo.12のアンチセンスオリゴマーと比べて、高い効率でエクソン53をスキッピングさせることが判明した図3。特に、PMONo.3及び8の本発明のオリゴマーは、PMONo.12のアンチセンスオリゴマーと比べて、7倍以上高いエクソンスキッピング効率を示す図3。[試験例3]ヒト線維芽細胞を用いたInvitroアッセイエクソン45から52が欠失したDMD患者またはエクソン48から52が欠失したDMD患者の左上腕内側より生検し、皮膚線維芽細胞株ヒトDMD患者エクソン45-52またはエクソン48-52由来線維芽細胞を樹立した。ZsGreen1共発現レトロウイルスベクターにより線維芽細胞にヒトmyoD遺伝子配列番号44を導入した。4から5日間インキュベートした後に、FACSによりZsGreen陽性のMyoD転換線維芽細胞を回収し、5×104個/cm2になるように12穴プレートに播種した。増殖培地は10FCS及び1Penicillin/StreptomycinP/Sシグマアルドリッチ社を含むDulbecco′sModifiedEagleMedium:NutrientMixtureF-12DMEM/F-12インビトロジェン社を1mL使用した。24時間後に分化培地2ウマ血清インビトロジェン社、1P/S及びITSLiquidMediaSupplementシグマ社含有DMEM/F-12に交換した。2、3日ごとに培地交換を行い12、14または20日間インキュベートし、筋管細胞に分化させた。その後、分化培地を6μMのEndo-Porterジーンツール社含有分化培地に交換し、終濃度10μMになるようにモルホリノオリゴマーを添加した。48時間インキュベート後に、TRIzolインビトロジェン社製により、細胞からtotalRNAを抽出した。抽出したtotalRNA50ngに対し、QIAGENOneStepRT-PCRKitを用いてRT-PCRを行った。添付のプロトコールに従って、反応液を調製した。サーマルサイクラーはiCyclerBio-Rad社製を用いた。用いたRT-PCRのプログラムは、以下の通りである。50°C、30分間:逆転写反応95°C、15分間:熱変性[94°C、1分間;60°C、1分間;72°C、1分間]x35サイクル:PCR増幅72°C、7分間:ポリメラーゼの熱失活プライマーはhEx44F及びh55Rを使用した。上記RT-PCR反応の反応産物を2アガロースゲル電気泳動によって分離し、GeneFlashSyngene社によりゲル写真を撮影した。ImageJアメリカ国立衛生研究所製により、エクソン53がスキップしたバンドのポリヌクレオチド量Aと、エクソン53がスキップしなかったバンドのポリヌクレオチド量Bを測定した。これらA及びBの測定値に基づき、以下の式に従って、スキッピング効率を求めた。スキッピング効率=A/ABx100実験結果結果を図4及び図5に示す。本実験により、PMONo.3及び8の本発明のオリゴマーは、エクソン45-52欠失図4またはエクソン48-52欠失図5DMD患者由来細胞において、80以上の高い効率でエクソン53をスキッピングさせることが判明した。また、PMONo.3及び8の本発明のオリゴマーは、エクソン45-52欠失DMD患者由来細胞において、PMONo.15のアンチセンスオリゴマーと比較して高い効率でエクソン53をスキッピングさせることが判明した図4。[試験例4]ウェスタンブロッティングPMONo.8の本発明のオリゴマーを10μMの濃度で細胞に添加し、72時間後の細胞からCompleteMiniRocheAppliedScience社製含有RIPAbufferThermoFisherScientific社製でタンパク質を抽出し、BCAproteinassaykitThermoFisherScientific社製でタンパク質を定量した。NuPAGENovexTris-AcetateGel3-8Invitrogen社製で150V、75分間電気泳動、セミドライブロッターでPVDF膜Millipore社製へ転写した。PVDF膜を5ECLBlockingagentGEHealthcare社製でブロッキング後、抗ジストロフィン抗体NCL-Dys1,Novocastra社製溶液中で膜をインキュベートした。さらに、peroxidase-conjugatedgoat-antimouseIgG型番、Bio-Rad溶液中でインキュベートした後、ECLPlusWesternblottingsystemGEHealthcare社製により発色した。免疫染色PMONo.3またはNo.8の本発明のオリゴマーを細胞に添加し、72時間後の細胞を3paraformaldehyde、10分間で固定化した。10Triton-Xで10分間インキュベートした。10ヤギ血清含有PBSでブロッキング、抗ジストロフィン抗体NCL-Dys1,Novocastra溶液中で膜をインキュベート、さらに抗マウスIgG抗体Invitrogen社製溶液中で膜をインキュベートした。ProLongGoldAntifadereagentInvitrogen社製でマウントし、蛍光顕微鏡で観察した。実験結果結果を図6及び図7に示す。本実験により、PMONo.3及び8の本発明のオリゴマーはジストロフィンタンパク質の発現を誘導することがウェスタンブロッティング図6及び免疫染色図7により確認できた。[試験例5]ヒト線維芽細胞を用いたInvitroアッセイ試験例3と同様の方法で実験を行った。実験結果結果を図8に示す。本実験により、PMONo.3及び8の本発明のオリゴマーは、エクソン45-52欠失DMD患者由来細胞において、PMONo.13及び14の本発明のオリゴマーよりも高い効率でエクソン53をスキッピングさせることが判明した図8。[試験例6]Invitroアッセイ配列番号49~123に記載の2’-O-メトキシ-ホスホロチオエート体2’-OMe-S-RNAのアンチセンスオリゴマーを用いて実験を行った。アッセイに用いた各種アンチセンスオリゴマーは日本バイオサービス社より購入した。各種アンチセンスオリゴマーの配列を以下に示す。RD細胞ヒト横紋筋肉腫細胞株3×105個を6穴プレートに播種し、10ウシ胎児血清FCSインビトロジェン社製を含むEagle′sminimalessentialmediumEMEM培地シグマ社製、以下同じ2mL中、37°C、5CO2条件下で一晩培養した。上記のエクソン53スキッピング用の各種アンチセンスオリゴマー日本バイオサービス社製1μMとLipofectamine2000インビトロジェン社製の複合体を作成し、1.8mLで培地交換したRD細胞に、200μl添加し、終濃度100nMとした。添加後、一晩培養した。細胞をPBSニッスイ社製、以下同じで2回洗浄した後、ISOGENニッポンジーン社製500μlを細胞に添加し、数分間室温に放置して細胞を溶解させ、該溶解物をEppendorfチューブに回収した。ISOGENに添付のプロトコールに従ってtotalRNAを抽出した。抽出したtotalRNAの濃度はNanoDropND-1000エルエムエス社製を用いて測定した。抽出したtotalRNA400ngに対し、TitanOneTubeRT-PCRKitロシュ社製を用いてOne-StepRT-PCRを行った。キットに添付のプロトコールに従って、反応液を調製した。サーマルサイクラーはPTC-100MJResearch社製を用いた。用いたRT-PCRのプログラムは、以下の通りである。50°C、30分間:逆転写反応94°C、2分間:熱変性[94°C、10秒間;58°C、30秒間;68°C、45秒間]x30サイクル:PCR増幅68°C、7分間:ポリメラーゼの熱失活RT-PCRに使用したフォワードプライマーとリバースプライマーの塩基配列は以下の通りである。次に、上記RT-PCRの増幅産物に対し、TaqDNAPolymeraseロシュ社製を用いてnestedPCRを行った。用いたPCRプログラムは、以下の通りである。94°C、2分間:熱変性[94°C、15秒間;58°C、30秒間;68°C、45秒間]x30サイクル:PCR増幅68°C、7分間:ポリメラーゼの熱失活上記nestedPCRに使用したフォワードプライマーとリバースプライマーの塩基配列は以下の通りである。上記nestedPCRの反応産物1μlをBioanalyzerアジレント社製を用いて解析した。エクソン53がスキップしたバンドのポリヌクレオチド量Aと、エクソン53がスキップしなかったバンドのポリヌクレオチド量Bを測定した。これらA及びBの測定値に基づき、以下の式に従って、スキッピング効率を求めた。スキッピング効率=A/ABx100実験結果結果を図9から図17に示す。本実験により、ヒトジストロフィン遺伝子の第53番目のエクソンの5’末端から第31~61番目にアンチセンスオリゴマーを設計した場合、高い効率でエクソン53をスキッピングさせることが判明した。[試験例7]RD細胞ヒト横紋筋肉腫細胞株3.5×105個に対して、アンチセンスオリゴマー0.3~30μMをAmaxaCellLineNucleofectorKitLを用いてNucleofectorIILonzaにより導入した。プログラムはT-030を用いた。導入後、細胞を、10ウシ胎児血清FCSインビトロジェン社製を含むEagle′sminimalessentialmediumEMEM培地シグマ社製、以下同じ2mL中、37°C、5CO2条件下で一晩培養した。細胞をPBSニッスイ社製、以下同じで2回洗浄した後、ISOGENニッポンジーン社製500μlを細胞に添加し、数分間室温に放置して細胞を溶解させ、該溶解物をEppendorfチューブに回収した。ISOGENに添付のプロトコールに従ってtotalRNAを抽出した。抽出したtotalRAの濃度はNanoDropND-1000エルエムエス社製を用いて測定した。抽出したtotalRNA400ngに対し、QIAGENOneStepRT-PCRKitキアゲン社製を用いてOne-StepRT-PCRを行った。キットに添付のプロトコールに従って、反応液を調製した。サーマルサイクラーはPTC-100MJResearch社製を用いた。用いたRT-PCRのプログラムは、以下の通りである。50°C、30分間:逆転写反応95°C、15分間:熱変性[94°C、30秒間;60°C、30秒間;72°C、1分間]x35サイクル:PCR増幅72°C、10分間:ポリメラーゼの熱失活RT-PCRに使用したフォワードプライマーとリバースプライマーの塩基配列は以下の通りである。上記PCRの反応産物1μlをBioanalyzerアジレント社製を用いて解析した。エクソン53がスキップしたバンドのポリヌクレオチド量Aと、エクソン53がスキップしなかったバンドのポリヌクレオチド量Bを測定した。これらA及びBの測定値に基づき、以下の式に従って、スキッピング効率を求めた。スキッピング効率=A/ABx100実験結果結果を図18及び19に示す。本実験により、PMONo.8の本発明のオリゴマーは、PMONo.15及び16のアンチセンスオリゴマーと比べて、著しく高い効率でエクソン53をスキッピングさせることが判明した図18。また、PMONo.3及び8の本発明のオリゴマーは、PMONo.13及び14の本発明のオリゴマーよりも著しく高い効率でエクソン53をスキッピングさせることが判明した図19。この結果から、同一配列であっても、5’末端が-OH基である方が、スキッピング効率が高いことが示される。"