粗油中の不ケン化物及び/又はエステル型ステロールを低下させた高度不飽和脂肪酸を構成脂肪酸とする粗油の製造方法において、不飽和脂肪酸を構成脂肪酸とする油脂を産生しうる微生物を、窒素源濃度2~15の培地で、攪拌翼直径と培養槽内径との比率がdD030~06である撹拌翼を装備した培養槽内で、培養することを特徴とする方法。前記攪拌翼直径と培養槽内径との比率が、dD034~06である、請求項1に記載の方法。前記窒素源が、pH5以下の条件で殺菌した窒素源を含む、請求項1又は2に記載の方法。請求項1~3のいずれか1項に記載の方法により得られた粗油を精製することを特徴とする精製油脂の製造方法。前記高度不飽和脂肪酸を構成脂肪酸とする油脂の組成がトリグリセリド70以上であることを特徴とする、請求項1~3のいずれか1項に記載の不ケン化物及び/又はエステル型ステロールを低下させた高度不飽和脂肪酸を構成脂肪酸とする粗油の製造方法、又は請求項4に記載の精製油脂の製造方法。前記油脂を構成する高度不飽和脂肪酸がγリノレン酸183ω6、ジホモγリノレン酸203ω6、アラキドン酸204ω6、7101316ドコサテトラエン酸224ω6、47101316ドコサペンタエン酸225ω6、αリノレン酸183ω3、691215オクタデカテトラエン酸184ω3、8111417エイコサテトラエン酸204ω3、エイコサペンタエン酸205ω3、710131619ドコサペンタエン酸225ω3、4710131619ドコサヘキエン酸226ω3、69オクタデカジエン酸182ω9、811エイコサジエン酸202ω9若しくは5811エイコサトリエン酸ミード酸:203ω9又はこれらの組み合わせである、請求項1~5のいずれか1項に記載の方法。前記微生物が、モルティエレラMortierella属、コニディオボラスConidiobolus属、フィチウムPythium属、フィトフトラPhytophthora属、ペニシリュームPenicillium属、クロドスポリュームCladosporium属、ムコールMucor属、フザリュームFusarium属、アスペルギルスAspergillus属、ロードトルラRhodotorula属、エントモフトラEntomophthora属、エキノスポランジウムEchinosporangium属、サプロレグニアSaprolegnia属に属する微生物である、請求項1~6のいずれか1項に記載の方法。前記微生物がモルティエレラ属のモルティエレラ亜属に属する微生物である、請求項1~7のいずれか1項に記載の方法。前記モルティエレラ亜属に属する微生物がモルティエレラ属アルピナ種である、請求項8に記載の方法。請求項1~9のいずれか1項に記載の方法により得られる、不ケン化物含量が22重量以下であることを特徴とする粗油。請求項10に記載の粗油を精製して得られる精製油脂。請求項1~9のいずれか1項に記載の方法により得られる、エステル型ステロール含量が10重量以下であることを特徴とする粗油。請求項12に記載の粗油を精製して得られる精製油脂。不ケン化物含量が22重量以下であることを特徴とする油脂中の不ケン化物及び/又はエステル型ステロールを低下させた高度不飽和脂肪酸を構成脂肪酸として成る粗油。請求項14に記載の粗油を精製して得られる精製油脂。エステル型ステロール含量が10重量以下であることを特徴とする油脂中の不ケン化物及び/又はエステル型ステロールを低下させた高度不飽和脂肪酸を構成脂肪酸として成る粗油。請求項16に記載の粗油を精製して得られる精製油脂。請求項10~17のいずれか1項に記載の粗油及び/又は精製油脂を配合してなる一般飲食物、機能性食品、栄養補助食品、未熟児用調製乳、成熟児用調製乳、乳幼児食品、妊産婦用食品又は老人用食品。請求項10~17のいずれか1項に記載の粗油及び/又は精製油脂を、場合によっては経口、腸内又は非経口投与に適した中性の担体と共に配合した治療用栄養食品。請求項10~17のいずれか1項に記載の粗油及び/又は精製油脂を配合した、動物用飼料又は養魚用飼料。請求項10~17のいずれか1項に記載の粗油及び/又は精製油脂を配合した医薬組成物。請求項10~17のいずれか1項に記載の粗油及び/又は精製油脂を原料として得られる医薬組成物。本発明は、油脂中、具体的には粗油中の不ケン化物及び/又はエステル型ステロール含量が低下した高度不飽和脂肪酸を構成脂肪酸として成る油脂粗油の製造方法、さらに該油脂粗油並びに該油脂粗油を精製した得た精製油脂トリグリセリドを配合して成る飲食物、治療用栄養食品、飼料及び医薬品に関するものである。本発明の油脂粗油は、高度不飽和脂肪酸を構成脂肪酸として成る油脂トリグリセリドを産生しうる微生物を窒素源濃度2~15の培地で培養し、その培養物から得られる微生物油脂であって、dD034~06の攪拌翼を装備した培養槽を用いて培養するか、あるいはdD034未満の培養槽の場合はpH5以下で殺菌した窒素源を含む培地で培養することにより、粗油中の不ケン化物及び/又はエステル型ステロール含量を低下させたものである。具体的には、油脂粗油に対して不ケン化物含量が22重量以下、好ましくは20重量以下、より好ましくは18重量以下であり及び/又はエステル型ステロール含量が10重量以下、好ましくは08重量以下、より好ましくは06重量以下であり、しかも、油脂粗油中の総脂肪酸に対する高度不飽和脂肪酸を10重量以上、好ましくは20重量以上、より好ましくは30重量以上、最も好ましくは40重量以上含有する。したがって、高度不飽和脂肪酸を構成脂肪酸として成る油脂トリグリセリドを産生しうる微生物を培養することが必須である。ここでいう微生物としては、炭素数が18以上で二重結合は3以上のω6系高度不飽和脂肪酸、炭素数が18以上で二重結合が2以上のω9系高度不飽和脂肪酸、及び炭素数が18以上で二重結合が3以上のω3系高度不飽和脂肪酸の少なくとも1種の高度不飽和脂肪酸を主にトリグリセリドの構成脂肪酸として産生する微生物が望ましい。そして、炭素数が18以上で二重結合は3以上のω6系高度不飽和脂肪酸としては、γリノレン酸6912オクタデカトリエン酸、ジホモγリノレン酸81114エイコサトリエン酸、アラキドン酸581114エイコサテトラエン酸、7101316ドコサテトラエン酸224ω6及びDPAω647101316ドコサペンタエン酸を、炭素数が18以上で二重結合が2以上のω9系高度不飽和脂肪酸としては、69オクタデカジエン酸、811エイコサジエン酸、及びミード酸5811エイコサトリエン酸を、炭素数が18以上で二重結合が3以上のω3系高度不飽和脂肪酸として、αリノレン酸91215オクタデカトリエン酸、691215オクタデカテトラエン酸184ω3、8111417エイコサテトラエン酸204ω3、EPA58111417エイコサペンタエン酸、DPAω3710131619ドコサペンタエン酸、及びDHA4710131619ドコサヘキサエン酸を挙げることができる。したがって、本発明においては、高度不飽和脂肪酸を構成脂肪酸として成る油脂トリグリセリドを産生しうる微生物であればすべて使用することができる。例えば、アラキドン酸を構成脂肪酸として成る油脂トリグリセリドの生産能を有する微生物としては、モルティエレラMortierella属、コニディオボラスConidiobolus属、フィチウムPythium属、フィトフトラPhytophthora属、ペニシリュームPenicillium属、クロドスポリュームCladosporium属、ムコールMucor属、フザリュームFusarium属、アスペルギルスAspergillus属、ロードトルラRhodotorula属、エントモフトラEntomophthora属、エキノスポランジウムEchinosporangium属、サプロレグニアSaprolegnia属に属する微生物を挙げることができる。モルティエレラMortierella属モルティエレラMortierella亜属に属する微生物では、例えばモルティエレラエロンガタMortierellaelongata、モルティエレラエキシグアMortierellaexigua、モルティエレラフィグロフィラMortierellahygrophila、モルティエレラアルピナMortierellaalpina等を挙げることができる。具体的にはモルティエレラエロンガタMortierellaelongataIFO8570、モルティエレラエキシグアMortierellaexiguaIFO8571、モルティエレラフィグロフィラMortierellahygrophilaIFO5941、モルティエレラアルピナMortierellaalpinaIFO8568、ATCC16266、ATCC32221、ATCC42430、CBS21935、CBS22437、CBS25053、CBS34366、CBS52772、CBS52972、CBS60870、CBS75468等の菌株を挙げることができる。例えば、DHAを産生しうる微生物として、クリプテコデニウムCrypthecodenium属、スラウトキトリウムThrautochytrium属、シゾキトリウムSchizochytrium属、ウルケニアUlkenia属、ジャポノキトリウムJaponochytrium属又はハリフォトリスHaliphthoros属に属する微生物を挙げることもできる。これらの菌株はいずれも、大阪市の財団法人醗酵研究所IFO、及び米国のアメリカンタイプカルチャーコレクションAmericanTypeCultureCollectionATCC及び、CentrralbureauvoorSchimmelculturesCBSからなんら制限なく入手することができる。また本発明の研究グループが土壌から分離した菌株モルティエレラエロンガタSAM0219微工研菌寄第8703号微工研条寄第1239号を使用することもできる。本発明に使用される菌株を培養する為には、その菌株の胞子、菌糸、又は予め培養して得られた種培養液あるいは種培養より回収した菌体を、液体培地に接種し本培養する。液体培地の場合に、炭素源としてはグルコース、フラクトース、キシロース、サッカロース、マルトース、可溶性デンプン、糖蜜、グリセロール、マンニトール、糖化澱粉等の一般的に使用されているものが、いずれも使用できるが、これらに限られるものではない。窒素源としてはペプトン、酵母エキス、麦芽エキス、肉エキス、カザミノ酸、コーンスティープリカー、大豆タンパク、脱脂ダイズ、綿実カス等の天然窒素源の他に、尿素等の有機窒素源、ならびに硝酸ナトリウム、硝酸アンモニウム、硫酸アンモニウム等の無機窒素源を用いることができるが、特に大豆から得られる窒素源、具体的には大豆、脱脂大豆、大豆フレーク、食用大豆タンパク、おから、豆乳、きな粉等が挙げられるが、特に、脱脂大豆に熱変性を施したもの、より好ましくは脱脂大豆を約70~90°Cで熱処理し、さらにエタノール可溶成分を除去したものを単独または複数で、あるいは前記窒素源と組み合わせて使用することができる。この他必要に応じて、リン酸イオン、カリウムイオン、ナトリウムイオン、マグネシウムイオン、カルシウムイオン以外に、鉄、銅、亜鉛、マンガン、ニッケル、コバルト等の金属イオンやビタミン等を微量栄養源として使用できる。これらの培地成分は微生物の生育を害しない濃度であれば特に制限はない。実用上、一般に炭素源は総添加量は01~40重量、好ましくは1~25重量、窒素源の総添加量は2~15重量、好ましくは2~10重量とするのが望ましく、より好ましくは初発の炭素源添加量を1~5重量、初発の窒素源添加量を3~8重量として、培養途中に炭素源及び窒素源を、さらにより好ましくは炭素源のみを流加して培養する。なお、不飽和脂肪酸の収率を増加せしめるために、不飽和脂肪酸の前駆体として、例えば、ヘキサデカン若しくはオクタデカンのごとき炭化水素;オレイン酸若しくはリノール酸のごとき脂肪酸又はその塩、あるいは脂肪酸エステル、例えばエチルエステル、グリセリン脂肪酸エステル、ソルビタン脂肪酸エステル;又はオリーブ油、大豆油、なたね油、綿実油若しくはヤシ油のごとき油脂類を単独で、又は組み合わせて使用できる。基質の添加量は培地に対して0001~10、好ましくは05~10である。またこれらの基質を唯一の炭素源として培養してもよい。高度不飽和脂肪酸を産生する微生物の培養温度は使用する微生物によりことなるが、5~40°C、好ましくは20~30°Cとし、また20~30°Cにて培養して菌体を増殖せしめた後5~20°Cにて培養を続けて不飽和脂肪酸を生産せしめることもできる。このような温度管理によっても、生成脂肪酸中の高度不飽和脂肪酸の割合を上昇せしめることができる。種培養では通気攪拌培養、振盪培養、固体培養、又は静置液体培養を、本培養では通気攪拌培養を行う。本培養開始時種培養液接種時の培地pHは5~7、好ましくは55~65に調製する。本培養期間は、通常2~30日間、好ましくは5~20日間、より好ましくは5~15日間行う。本発明の油脂粗油は、高度不飽和脂肪酸を構成脂肪酸としてなる油脂トリグリセリドを産生しうる微生物を培養し、その培養物から得られる微生物油脂であって、dD034~06の攪拌翼を装備した培養槽を用いて本培養するか、あるいはdD034未満の培養槽の場合はpH5以下で殺菌した窒素源を含む培地で本培養することにより、粗油中の不ケン化物及び/又はエステル型ステロール含量を低下させることを最大の特徴としている。したがって、高度不飽和脂肪酸を構成脂肪酸として成る油脂トリグリセリドを産生する微生物を用い、粗油中の不ケン化物及び/又はエステル型ステロール含量を低下させる方法を明らかとした。本培養方法として、攪拌翼直径、培養槽内径の比率が、dD030~06、好ましくはdD034~055、より好ましくはdD037~055、最も好ましくはdD042~055の培養槽を用いて培養を行なうことにより、粗油中の不ケン化物及び/又はエステル型ステロール含量を低下させることを最大の特徴としている。また、比率dDによるより優れた効果を得るためには、容積が1m3以上、好ましくは容積5m3以上、より好ましくは容積10m3以上の培養槽を用いることが望ましい。攪拌翼は、タービン翼をはじめとする攪拌翼を1段あるいは複数段で用いることができるがこれらに限定されるわけではない。培地pHの調製を培地殺菌の後に行なうためには、雑菌汚染を起こさないように無菌的に作業をしなければならないため、通常は培地殺菌の前に行なわれる。例えば、殺菌前後でpH変化が無い培地を用いて、培養開始時のpHを60に調製する場合には、殺菌前に非無菌作業でpHを60に調製すれば、殺菌後の無菌作業によるpH調製は不要である。dDが034未満の培養槽においてもエステル型ステロールを低減できる方法として、発明者らは、殺菌工程におけるpH条件が培養の生産性や生産物組成に影響を及ぼす可能性について着目し検討を重ねた結果、pH5以下に調製した培地を殺菌し、殺菌後に培養開始pHに再調製する方法が好ましいことを見出した。具体的には、培地窒素源を含む溶液をpH4~5、好ましくはpH42~47に調製した後に殺菌する。そして殺菌培地をそのままか、あるいは別殺菌する添加培地があればそれらを添加して培養開始培地を調製した後に、pH5~7に、好ましくはpH55~65に調製して、種培養液を接種して本培養を開始する。殺菌前の窒素源含有溶液のpHを調製する手段としては、硫酸、塩酸、リン酸、硝酸、炭酸あるいはこれらの塩を一つあるいは複数組み合わせたpH調整剤を添加するが特に制限しない。殺菌後の培地pHを再調製する手段としては、水酸化ナトリウム、水酸化カリウムなどの水酸化化合物や、アンモニアやアンモニウム塩などの一つあるいは複数組み合わせたpH調整剤を添加するが特に制限しない。モルティエレラ属モルティエレラ亜属に属する微生物は、アラキドン酸を主たる構成脂肪酸として成る油脂トリグリセリドを産生しうる微生物として知られているが、本発明者らは、上記菌株に変異処理を施すことによって、ジホモγリノレン酸を主たる構成脂肪酸としてなる油脂トリグリセリドを産生しうる微生物特開平591887や、ω9系高度不飽和脂肪酸を主たる構成脂肪酸としてなる油脂トリグリセリドを産生しうる微生物を特開平591888得ている。さらに、高濃度の炭素源に耐性を有する微生物WO9839468も得ており、これら微生物は、モルティエレラ属モルティエレラ亜属の微生物であり、本発明の培養法、具体的にはdD034~06の攪拌翼を装備した培養槽を用いて本培養するか、あるいはdD034未満の培養槽の場合はpH5以下で殺菌した窒素源を含み、培地窒素源濃度2~15の培地で本培養することによって、容易に粗油中の不ケン化物及び/又はエステル型ステロール含量を低下させることができる。しかし、本発明はモルティエレラ属モルティエレラ亜属に属する微生物に限定しているわけではなく、高度不飽和脂肪酸を構成脂肪酸として成る油脂トリグリセリドを産生しうる微生物に、本発明の培養法、具体的にはdD034~06の攪拌翼を装備した培養槽を用いて本培養するか、あるいはdD034未満の培養槽の場合はpH5以下で殺菌した窒素源を含み、培地窒素源濃度2~15の培地で本培養する方法を適用して、目的とする不ケン化物及び/又はエステル型ステロール含量を低下させた粗油を得ることができる。dD034~06の攪拌翼を装備した培養槽を用いて本培養するか、あるいはdD034未満の培養槽の場合はpH5以下で殺菌した窒素源を含み、培地窒素源濃度2~15の培地で本培養することによって、不ケン化物及び/又はエステル型ステロール含量を低下せしめた高度不飽和脂肪酸を構成脂肪酸として成る油脂を菌体内に蓄積した微生物から、粗油を得る方法として、培養終了後、培養液をそのままかあるいは殺菌、濃縮、酸性化などの処理を施した後、自然沈降、遠心分離および/又は濾過などの常用の固液分離手段により培養菌体を得る。固液分離を助けるために、凝集剤や濾過助剤を添加してもよい。凝集剤としては、例えば、塩化アルミニウム、塩化カルシウム、アルギン、キトサンなどを使用できる。濾過助剤としては、例えば、珪藻土を使用できる。培養菌体は好ましくは、水洗、破砕、乾燥する。乾燥は、凍結乾燥、風乾、流動層乾燥、凍結乾燥などによって行うことができる。乾燥菌体から粗油を得る手段としては、有機溶剤による抽出法や圧搾法を用いることができるが、好ましくは窒素気流下で有機溶剤によって抽出する。有機溶剤としてはエタノール、ヘキサン、メタノール、エタノール、クロロホルム、ジクロロメタン、石油エーテル、アセトン等を用いることができ、またメタノールと石油エーテルの交互抽出やクロロホルム-メタノール-水の一層系の溶媒も用いることができる。しかしながら、粗油の取得に用いる抽出法を上記の方法に限定しているわけではなく、菌体内の油脂を効率的に抽出する手法はすべて使用することができる。例えば、超臨界抽出法なども有効な手段として使用することができる。有機溶剤や超臨界流体で抽出された抽出物から減圧下などの条件下で有機溶剤や超臨界流体成分を除去することにより、目的とする粗油を得ることができる。また、上記の方法に代えて湿菌体を用いてい抽出を行うことができる。この場合にはメタノール、エタノール、アセトン等の水に対して相溶性の溶媒、又はこれらと水及び/又は他の溶媒とからなる水に対して相溶性の混合溶媒を使用する。その他の手順は上記と同様である。本発明で得た不ケン化物及び/又はエステル型ステロール含量を低下せしめた高度不飽和脂肪酸を構成脂肪酸として成る粗油は、動物飼料に配合して直接使用することができる。しかし、食品への適応を考えた場合、一般の油脂精製工程に供して使用することが望ましい。油脂精製工程として、脱ガム、脱酸、脱臭、脱色、カラム処理、分子蒸留、ウィンタリングなどの常法の工程を用いることができる。したがって、常法の油脂精製工程で取り除くことの出来なかったエステル型ステロールを低下せしめた本発明の粗油を油脂精製工程に供することで、今までにない不ケン化物及び/又はエステル型ステロールを低下させた精製油脂を得ることができる。さらに、エステル型ステロールを低下せしめた本発明の粗油を油脂精製工程に供することで、精製工程における工程負荷を下げることもできる。具体的には、例えば、精製工程における処理時間の短縮やエネルギーコストを削減しても、なおかつ従来と同等の不ケン化物及び/又はエステル型ステロール含量の精製油脂が得ることや、従来と同等の処理時間やエネルギーコストでありながら、今まで以上に不ケン化物及び/又はエステル型ステロール含量を低下させた精製油脂が得られることである。本発明の精製油脂トリグリセリドの用途に関しては無限の可能性があり、食品、飲料、化粧品、医薬品の原料並びに添加物として使用することがでる。そして、その使用目的、使用量に関して何ら制限を受けるものではない。例えば、食品組成物としては、一般食品の他、機能性食品、栄養補助食品、未熟児用調製乳、成熟児用調製乳、乳児用調製乳、乳児用食品、妊産婦食品又は老人用食品等を挙げることができる。油脂を含む食品例として、肉、魚、またはナッツ等の本来油脂を含む天然食品、スープ等の調理時に油脂を加える食品、ドーナッツ等の熱媒体として油脂を用いる食品、バター等の油脂食品、クッキー等の加工時に油脂を加える加工食品、あるいはハードビスケット等の加工仕上げ時に油脂を噴霧または塗布する食品等が挙げられる。さらに、油脂を含まない、農産食品、醗酵食品、畜産食品、水産食品、または飲料に添加することができる。さらに、機能性食品医薬品の形態であっても構わなく、例えば、経腸栄養剤、粉末、顆粒、トローチ、内服液、懸濁液、乳濁液、シロップ等の加工形態であってもよい。次に、実施例により、本発明をさらに具体的に説明する。しかし、本発明は、実施例に限定されない。実施例1アラキドン酸生産、dD034、培地中大豆粉濃度6アラキドン酸生産菌としてMortierellaalpinaCBS75468を用いた。保存菌株を、酵母エキス1、グルコース2、pH63の培地に接種し、往復振盪100rpm、温度28°Cの条件にて種培養第一段階を開始し、3日間培養した。次に、酵母エキス1、グルコース2、大豆油01、pH63の培地30Lを50L容通気攪拌培養槽に調製し、これに種培養第一段階液を接種して、攪拌回転数200rpm、温度28°C、槽内圧150kPaの条件にて、種培養第二段階を開始し、2日間培養した。次に、4500Lの培地培地A:大豆粉336kg、KH2PO4168kg、MgCl26H2O28kg、CaCl22H2O28kg、大豆油56kg、を条件ではpHを63に調製して、条件ではpHを45に調製して両条件とも、121°C、20分の条件で滅菌した。別培地として、1000Lの培地培地B:含水グルコース112kgを140°C、40秒の条件で滅菌して先の培地Aに加えて培地Cを調製した。培地Cを条件ではpH無調製で、条件12ではpH63に調整した後、種培養液第二段階を接種して、計5600Lの初発培養液量培養槽容積10kLに合わせた。温度26°C、通気量49Nm3hr、内圧200kPaで培養を開始した。培養槽の形状としては、槽内径と攪拌翼径の比率がdD034の6枚羽根タービンを3段装備した培養槽を用いた。また、表1に示すように培地流加を行ない、306時間の本培養を行なった。培養終了時は、培地流加による増加分と蒸発による減少分の影響で、7750Lの培養液量となった。培養終了時の培養液当たりアラキドン酸生成濃度は条件で182gL、条件で184gLであった。培養終了後、120°C、20分の条件で殺菌した後、連続式脱水機で湿菌体を回収し、振動流動層乾燥機で水分含量1wtまで乾燥し、空気輸送機を用いて充填場所に乾燥菌体を輸送した。得られた乾燥菌体を、容積約1m3のアルミパウチ製コンテナバッグに窒素ガスとともに充填し、バッグ口部をヒートシールシールした後、10°C以下の冷蔵室で保管した。コンテナバッグより取り出した乾燥菌体に、ヘキサン抽出を施し、ヘキサン溶液を濾過して含有固形分を除去した後、減圧下で加熱することによってヘキサンを除去し、アラキドン酸を構成脂肪酸として成る粗油を得た。粗油を分析した結果、表2に示すように、エステル型ステロール含量の低い粗油が得られた。実施例2.アラキドン酸生産、dD042、培地中大豆粉濃度6実施例1と同じ方法で種培養を行った。培養槽の形状としては、dD042の6枚羽根タービンを3段装着のタンクを使用し、培地調製時のpH条件を変更するほかは、全て実施例1条件と同じ条件で本培養を行った。条件では培地A殺菌前のpH61調製かつ培地C種培養液接種前のpH無調製、条件では培地AのpH45調製かつ培地CのpH61調製で各々培養した。培養の結果、培養終了時の培養液当たりアラキドン酸生成濃度は条件で190gL、条件で197gLであった。培養終了後は、実施例1と同様の操作によって、アラキドン酸を構成脂肪酸として成る粗油を得た。粗油を分析した結果、表3に示すように、エステル型ステロール含量の低い粗油が得られた。実施例3.アラキドン酸生産、dD0302502、培地中大豆粉濃度6実施例1と同じ方法で種培養を行なった。培養槽形状としては、dD03の6枚羽根タービン2段装備のタンク、dD025の6枚羽根タービン2段装備のタンク、およびdD02の6枚羽根タービン2段装備のタンクを使用するほかは、全て実施例1の条件と同じ条件で本培養を行った結果、培養終了時の培養液当たりアラキドン酸生成濃度は、dD030のタンクでは170gL、dD025のタンクでは165gL、dD02のタンクでは135gLであった。培養終了後は実施例1と同様の操作によって、アラキドン酸を構成脂肪酸として成る粗油を得た。粗油を分析した結果、表4に示すように、エステル型ステロール含量は何れも1を超えており、実施例1および実施例2との比較から、dD比が小さい培養槽で培養したためと考えられた。実施例4.アラキドン酸生産、dD0302502、培地中大豆粉濃度6、低pH殺菌実施例1と同じ方法で種培養を行なった。本培養培地のpH調製は、実施例1の条件と同様に行なった上で培地AのpH45→殺菌→培地CのpH63、dD03の6枚羽根タービン2段装備のタンク条件41、dD025の6枚羽根タービン2段装備のタンク条件42、およびdD02の6枚羽根タービン2段装備条件43の計3条件で、実施例1と同様の条件で本培養を行なった。これらに加えて、dD03のタンクで、培地Aの調製pHを40条件44、49条件45の2条件でも培養を行なった。本培養の結果、培養終了時の培養液当たりアラキドン酸生成濃度は、条件41pH45殺菌dD030では172gL、条件42pH45殺菌dD025では168gL、条件43pH45殺菌dD020では140gL、条件44pH40殺菌dD030では171gL、条件45pH49殺菌dD030では172gLであった。培養終了後は実施例1と同様の操作によって、アラキドン酸を構成脂肪酸として成る粗油を得た。粗油の分析結果を表5に示す。dD=030の培養槽を用いた場合、培地窒素源をpH45で殺菌することによって、エステル型ステロール含量を1以下に低減できたことが実施例3との比較から分かる。しかし、dD025、dD020の培養槽の場合、窒素源をpH45で殺菌しても、エステル型ステロール含量は1以下に低減することができなかった。また、条件およびの比較より、窒素源の殺菌pHは40から49の範囲であれば、エステル型ステロールの低減効果は同等であると考えられた。実施例5.粗油を精製して得た精製油脂の分析結果実施例1条件及び実施例2条件で得たアラキドン酸含有粗油を常法の脱酸、脱ガムにより精製し、精製油脂5A及び5Bを得た。実施例3のdD025条件で得たアラキドン酸含有粗油も同様に精製し、精製油脂5Cを得た。得られたアラキドン酸含有精製油脂の分析値を表6に示す。実施例6.大豆粉15条件でのアラキドン酸生産MortierellaalpinaCBS75468を用いて、実施例1と同じ方法で種培養第一段階および第二段階を行なった。次に、4500Lの培地培地A:大豆粉84kg、KH2PO4168kg、MgCl26H2O28kg、CaCl22H2O28kg、大豆油56kg、を、121°C、20分の条件で滅菌した。別培地として、1000Lの培地培地B:含水グルコース112kgを140°C、40秒の条件で滅菌して先の培地Aに加えて培地Cを調製した。培地CをpH61に調整した後、種培養液第二段階を接種して、計5600Lの初発培養液量培養槽容積10kLに合わせた。温度26°C、通気量49Nm3hr、内圧200kPaで本培養を開始した。本培養槽の形状としては、槽内径と攪拌翼径の比率がdD034の6枚羽根タービンを2段装備した培養槽、およびdD025の6枚羽根タービンを2段装備した培養槽を用いて、各々の培養槽で培養を行なった。また、表7に示すように培地流加を行ない、162時間の本培養を行なった。培養終了時の培養液当たりアラキドン酸生成濃度は、dD034のタンクで50gL、dD025のタンクで47gLであった。培養終了後、実施例1と同様の方法で乾燥菌体を回収し、ヘキサン抽出によって、アラキドン酸を構成脂肪酸として成る粗油を得た。得られた粗油の分析値を表8に示す。培地窒素源15の条件では、dD025、034の何れの条件でもエステル型ステロール含量1以下の粗油が得られた。実施例7.ジホモγリノレン酸生産:dD030034025、培地中大豆粉濃度4、窒素源殺菌pH45の影響本発明者らは、ジホモγリノレン酸を構成脂肪酸として成る油脂トリグリセリドの製造方法を確立している。特開平591887号公報の記載の方法にしたがって、アラキドン酸生産能を有し、かつΔ5不飽和化活性が低下した微生物例えば、突然変異株モルティエレラアルピナSAM1860微工研菌寄第3589号を培養して得ることができる。ジホモγリノレン酸生産菌としてMortierellaalpinaSAM1860を用いた。保存菌株を、酵母エキス1、グルコース2、pH63の培地100mLを500mL三角フラスコに調製に接種し、往復振盪100rpm、温度28°Cの条件にて種培養第一段階を開始し、3日間培養した。次に、酵母エキス1、グルコース2、大豆油0.1、pH63の培地30Lを50L容通気攪拌培養槽に調製し、これに種培養第一段階液を接種して、攪拌回転数200rpm、温度28°C、槽内圧150kPaの条件にて、種培養第二段階を開始し、2日間培養した。本培養は、条件~の4水準で行なった。条件としては、4500Lの培地培地A:大豆粉224kg、KH2PO4168kg、MgCl26H2O28kg、CaCl22H2O28kg、大豆油56kgに水酸化ナトリウム水溶液を添加してpHを61に調製した後121°C、20分の条件で滅菌した。別培地として、1000Lの培地培地B:含水グルコース112kgを140°C、40秒の条件で滅菌して先の培地Aに加えて培地Cを調製した。培地CのpHを測定した結果pH61であった。培地Cに、種培養液第二段階を接種して、計5600Lの初発培養液量培養槽容積10kLに合わせた。温度26°C、通気量49Nm3hr、内圧200kPaで培養を開始した。培養槽の形状としては、槽内径と攪拌翼径の比率がdD034の6枚羽根タービンを2段装備した培養槽を用いた。培養中の発泡は、消泡センサーで検知し、大豆油を自動添加することによって、発泡による培養液の槽外排出を防止した。また、表9に示すように培地流加を行ない、288時間の本培養を行なった。培養終了時は、培地流加による増加分と蒸発による減少分の影響で、7600Lの培養液量となった。条件としては、培地Aに硫酸を非無菌操作で添加してpH45に調製し、培地Cに水酸化ナトリウム水溶液を無菌操作で添加してpHを61に調製し、dD03の培養槽を用いる他は条件と同様の本培養条件で培養した。条件は、dD030の培養槽を用いる他は条件と同様の条件で培養を行なった。条件は、dD025の培養槽を用いる他は条件と同様の条件で培養を行なった。培養終了時の培養液当たりジホモγリノレン酸生成濃度は条件、条件ともに123gLであり、条件では110gL、条件では100gLであった。培養終了後、120°C、20分の条件で殺菌した後、連続式脱水機で湿菌体を回収し、振動流動層乾燥機で水分含量1wtまで乾燥し、空気輸送機を用いて充填場所に乾燥菌体を輸送した。得られた乾燥菌体を、容積約1m3のアルミパウチ製コンテナバッグに窒素ガスとともに充填し、バッグ口部をヒートシールシールした後、10°C以下の冷蔵室で保管した。コンテナバッグより取り出した乾燥菌体に、ヘキサン抽出を施し、ヘキサン溶液を濾過して含有固形分を除去した後、減圧下で加熱することによってヘキサンを除去し、ジホモγリノレン酸を構成脂肪酸として成る粗油を得た。粗油を分析した結果を表10に示す。dD034の培養槽ではエステル型ステロール含量が1以下の粗油が得られた。dD03の培養槽では、条件のようにpH調製を従来法で行なうとエステル型ステロール含量の高い粗油が得られたが、条件のように培地窒素源をpH45で殺菌するとエステル型ステロール含量が1以下に低下した。dD025の培養槽では、エステル型ステロール含量が1を上回った。実施例8.ジホモγリノレン酸生産:大豆粉15条件での培養MortierellaalpinaSAM1860を用いて、実施例7と同じ方法で種培養を行なった。次に、4500Lの培地培地A:大豆粉84kg、KH2PO4168kg、MgCl26H2O28kg、CaCl22H2O28kg、大豆油56kgを、121°C、20分の条件で滅菌した。別培地として、1000Lの培地培地B:含水グルコース112kgを140°C、40秒の条件で滅菌して先の培地Aに加えて培地Cを調製した。培地CをpH61に調整した後、種培養液を接種して、計5600Lの初発培養液量培養槽容積10kLに合わせた。温度26°C、通気量49Nm3hr、内圧200kPaで培養を開始した。培養槽の形状としては、槽内径と攪拌翼径の比率がdD034の6枚羽根タービンを2段装備した培養槽、およびdD025の6枚羽根タービンを2段装備した培養槽を用いた。培養中の発泡は、消泡センサーで検知し、大豆油を自動添加することによって、発泡による培養液の槽外排出を防止した。また、表11に示すように培地流加を行ない、162時間の本培養を行なった。培養終了時の培養液当たりジホモγリノレン酸生成濃度はdD034のタンクで48gL、dD025のタンクで47gLであった。培養終了後、実施例7と同様の方法で乾燥菌体を回収し、ヘキサン抽出によって、ジホモγリノレン酸を構成脂肪酸として成る粗油を得た。得られた粗油の分析値を表12に示す。実施例9.ミード酸生産:dD05、培地中大豆粉濃度4本発明者らは、ω9系高度不飽和脂肪酸を構成脂肪酸として成る油脂トリグリセリドの製造方法を確立している。特開平591888号公報の記載の方法にしたがって、ω9系高度不飽和脂肪酸生産能を有する微生物例えば、突然変異株モルティエレラアルピナSAM1861微工研菌寄第3590号を培養して得ることができる。さらに、ミード酸を構成脂肪酸として成る油脂トリグリセリドの製造方法も確立しており、特開平1057085号公報に記載の方法にしたがって、アラキドン酸生産能を有する微生物に変異処理を施して得られる、Δ12不飽和化酵素が低下又は欠失し、かつΔ5不飽和化活性、Δ6不飽和化活性及び/又鎖延長活性の少なくとも一つが高められた変異株例えば、モルティエレラアルピナSAM20868生寄文第1235号、FERMP15766を培養して得ることができる。ミード酸生産菌としてMortierellaalpinaSAM2086を用いた。保存菌株を、酵母エキス1、グルコース2、pH63の培地培地500mLを2000mL三角フラスコに調製に接種し、回転振盪100rpm、温度28°Cの条件にて種培養第一段階を開始し、3日間培養した。次に、酵母エキス1、グルコース2、オリ-ブ油0.1、pH63の培地30Lを50L容通気攪拌培養槽に調製し、これに種培養第一段階液を接種して、攪拌回転数300rpm、温度28°C、槽内圧200kPaの条件にて、種培養第二段階を開始し、2日間培養した。次に、3200Lの培地培地A:大豆粉160kg、オリーブ油4kg、を121°C、20分の条件で滅菌した。別培地として、700Lの培地培地B:含水グルコース80kgを140°C、90秒の条件で滅菌して先の培地Aに加えて培地Cを調製した。培地CをpH61に調製した後、種培養液第二段階を接種して、計4000Lの初発培養液量培養槽容積10kLに合わせた。温度24°C、通気量49Nm3hr、内圧200kPa、所要攪拌動力2kWで本培養を開始した。なお、培養4日目に温度を20°Cにシフトした。培養槽の形状としては、槽内径と攪拌翼径の比率がdD05の6枚羽根タービンを2段装着した培養槽を用いた。また、表13に示すように培地流加を行ない、456時間の本培養を行なった。培養終了時の培養液当たりミード酸生成濃度は101gLであった。培養終了後、120°C、20分の条件で殺菌した後、連続式脱水機で湿菌体を回収し、振動流動層乾燥機で水分含量1wtまで乾燥し、空気輸送機を用いて充填型コンテナバックに窒素ガスとともに充填し、バッグ口部をヒートシールシールした後、10°C以下の冷蔵室で保管した。コンテナバッグより取り出した乾燥菌体に、ヘキサン抽出を施し、ヘキサン溶液を濾過して含有固形分を除去した後、減圧下で加熱することによってヘキサンを除去し、ミード酸含有粗油を得た。得られた粗油の分析結果を表14に示す。実施例10.ミード酸生産:dD025、培地中大豆粉濃度4実施例9と同じ方法で種培養を行った。培養槽形状としては、dD025の6枚羽根タービン2段装備のタンクを使用するほかは、全て実施例9と同じ条件で本培養を行った結果、培養終了時の培養液当たりミード酸生成濃度は80gLであった。培養終了後、実施例9と同様の操作によって、ミード酸を構成脂肪酸として成る粗油を得た。得られたミード酸含有粗油の分析値を表14に示す。実施例11.ミード酸生産、大豆粉15条件での培養MortierellaalpinaSAM2086を用いて、実施例9と同じ方法で種培養を行なった。次に、3200Lの培地培地A:大豆粉60kg、オリーブ油4kg、を121°C、20分の条件で滅菌した。別培地として、700Lの培地培地B:含水グルコース80kgを140°C、90秒の条件で滅菌して先の培地Aに加えて培地Cを調製した。培地CをpH61に調製した後、種培養液を接種して、計4000Lの初発培養液量培養槽容積10kLに合わせた。温度24°C、通気量49Nm3hr、内圧200kPa、所要攪拌動力2kWで本培養を開始した。なお、培養4日目に温度を20°Cにシフトした。培養槽の形状としては、槽内径と攪拌翼径の比率がdD034の6枚羽根タービンを2段装備した培養槽、およびdD025の6枚羽根タービンを2段装備した培養槽を用いた。また、表15に示すように培地流加を行ない、300時間の本培養を行なった。培養終了時の培養液当たりミード酸生成濃度はdD034のタンクで39gL、dD025のタンクで38gLであった。培養終了後、実施例9と同様の方法で乾燥菌体を回収し、ヘキサン抽出によって、ミード酸を構成脂肪酸として成る粗油を得た。得られた粗油の分析値を表16に示す。実施例12.エステル型ステロールの低減化したアラキドン酸を構成脂肪酸とする精製油脂トリグリセリド配合カプセルの調製ゼラチン100重量部及び食添グリセリン35重量部に水を加え50~60°Cで溶解しゼラチン被膜を調製した。次に実施例5で得られたエステル型ステロールの低減化したアラキドン酸を構成脂肪酸とする精製油脂5AトリグリセリドにビタミンE油005を混合した内容物から、常法によりカプセル成形及び乾燥を行い、一粒180mgの内容物を含有するソフトカプセルを製造した。また、実施例5で得られた精製油脂5Bを原料とするソフトカプセルも、精製油脂5Aの場合と同様に製造した。実施例13.脂肪輸液剤への使用実施例5で得られたエステル型ステロールの低減化したアラキドン酸を構成脂肪酸とする精製油脂5Aトリグリセリド400g、精製卵黄レシチン48g、オレイン酸20g、グリセリン100g及び01N苛性ソーダ40mlを加え、ホモジナイザーで分散させたのち、注射用蒸留水を加えて4リットルとする。これを高圧噴霧式乳化機にて乳化し、脂質乳液を調製した。該脂質乳液を200mlずつプラスチック製バッグに分注したのち、121°C、20分間、高圧蒸気滅菌処理して脂肪輸液剤を製造した。また、実施例5で得られた精製油脂5Bを原料とする脂肪輸液剤も、精製油脂5Aの場合と同様に製造した。実施例14.ジュースへの使用βシクロデキストリン2gを20エタノール水溶液20mlに添加し、ここにスターラーで撹拌しながら、実施例5で得られたエステル型ステロールの低減化したアラキドン酸を構成脂肪酸とする精製油脂5AトリグリセリドビタミンEを005配合100mgを加え、50°Cで2時間インキュベートした。室温冷却約1時間後、さらに撹拌を続けながら4°Cで10時間インキュベートした。生成した沈殿を、遠心分離により回収し、nヘキサンで洗浄後、凍結乾燥を行い、アラキドン酸含有トリグリセリドを含有するシクロデキストリン包接化合物18gを得た。この粉末1gをジュース10Lに均一に混ぜ合わせ、エステル型ステロールの低減化したアラキドン酸を構成脂肪酸とする精製油脂トリグリセリドを含有するジュースを調製した。また、実施例5で得られた精製油脂5Bを原料とするジュースも、精製油脂5Aの場合と同様に調製した。実施例15.粉ミルクへの使用粉ミルク100gに、実施例5で得られたエステル型ステロールの低減化したアラキドン酸を構成脂肪酸とする精製油脂5Aトリグリセリド03gを混合することにより調製粉乳を調製した。また、実施例5で得られた精製油脂5Bを原料とする調製粉乳も、精製油脂5Aの場合と同様に調製した。実施例16.種々の菌株を用いた培養法アラキドン酸生産菌としてMortierellaelongataIFO8570、MortierellahygrophilaIFO5941、EchinosporangiumtransversaleNRRL3116、ConidiobolusnanodesCBS15456、SaprolegnialapponicaCBS28438を用いた。これらの保存菌株をそれぞれ、酵母エキス1、グルコース2、pH63の培地に接種し、往復振盪100rpm、温度28°Cの条件にて種培養を3日間行った。次に、25Lの培地グルコース500g、大豆粉775g、KH2PO450g、MgCl26H2O75g、CaCl22H2O75g、大豆油25g、pH63を50L容通気攪拌培養槽に調製し、これに種培養液を接種して、攪拌回転数200rpm、温度28°C、槽内圧150kPaの条件にて本培養を開始した。培養槽の形状としては、dD042の6枚羽根タービンを2段装備した培養槽を用いた。グルコース濃度が12程度になるように、約24時間ごとに50グルコース溶液を添加しながら、186時間培養を行った。培養終了後、120°C、20分の条件で殺菌した。減圧濾過で湿菌体を回収し、水分含量1wtまで乾燥した。得られた乾燥菌体に、ヘキサン抽出を施し、ヘキサン溶液を濾過して含有固形分を除去した後、減圧下で加熱することによってヘキサンを除去し、アラキドン酸を構成脂肪酸として成る粗油を得た。得られたアラキドン酸含有粗油の分析値を表17に示す。