"下記1~3の何れかの構造を有することを特徴とするプロモーター。1ClorDNAウィルスの構造タンパク質をコードする遺伝子の上流に位置する非コード領域を構成するポリヌクレオチド2上記ポリヌクレオチド1の1または複数のヌクレオチドが欠失、置換または付加されたポリヌクレオチドであり、且つ任意のタンパク質をコードする遺伝子の発現を藻類細胞内で活性化するポリヌクレオチド3上記ポリヌクレオチド1の配列と相補的な塩基配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェントな条件でハイブリダイズし、且つ任意のタンパク質をコードする遺伝子の発現を藻類細胞内で活性化するポリヌクレオチド上記ポリヌクレオチド1が配列番号13の塩基配列を有するものである請求項1に記載のプロモーター。上記ポリヌクレオチド1が配列番号12の塩基配列を有するものである請求項1に記載のプロモーター。上記ポリヌクレオチド1が配列番号11の塩基配列を有するものである請求項1に記載のプロモーター。上記ポリヌクレオチド1が配列番号1の塩基配列を有するものである請求項1に記載のプロモーター。請求項1~5のいずれかに記載のプロモーター、および任意のタンパク質をコードする遺伝子を含有することを特徴とするベクター。請求項6に記載のベクターを調製する工程;および上記ベクターを藻類細胞へ導入する工程;を含むことを特徴とする藻類の形質転換方法。上述したように、その数は極めて少ないものの、カリフラワーモザイクウィルスに由来するCaMV35Sプロモーターなどのウィルスプロモーターを用いて藻類を形質転換した報告例はある。しかし、形質転換体が得られなかったり再現性が無いという報告もある。また、一般的に、藻類、とりわけ海産藻類の形質転換効率は非常に低いことから、高効率な形質転換技術の開発が切望されている。そこで本発明が解決すべき課題は、効率の高い形質転換技術、具体的には、藻類を形質転換するために用いられる高効率のプロモーター、当該プロモーターを含むベクター、および当該ベクターを用いる藻類の形質転換方法を提供することにある。本発明者らは、上記課題を解決すべく鋭意研究を行った。その結果、Chaetoceroscf.lorenzianusDNAウィルスClorDNAウィルスの構造タンパク質をコードすると考えられる遺伝子の上流に位置するプロモーターが、藻類を極めて効率的に形質転換できることを見出して、本発明を完成した。本発明に係る新規プロモーターは、下記1~3の何れかの塩基配列を有することを特徴とする。下記1~3の何れかの構造を有することを特徴とするプロモーター。1ClorDNAウィルスの構造タンパク質をコードする遺伝子の上流に位置する非コード領域を構成するポリヌクレオチド2上記ポリヌクレオチド1の1または複数のヌクレオチドが欠失、置換または付加されたポリヌクレオチドであり、且つ任意のタンパク質をコードする遺伝子の発現を藻類細胞内で活性化するポリヌクレオチド3上記ポリヌクレオチド1の配列と相補的な塩基配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェントな条件でハイブリダイズし、且つ任意のタンパク質をコードする遺伝子の発現を藻類細胞内で活性化するポリヌクレオチド本発明に係るベクターは、上記新規プロモーター、および任意のタンパク質をコードする遺伝子を含有することを特徴とする。また、本発明に係る藻類の形質転換方法は、上記ベクターを調製する工程;および、上記ベクターを藻類細胞へ導入する工程を含むことを特徴とする。本発明に係るプロモーターを含むベクターを用いれば、藻類を効率的に形質転換し得る。よって、高い光合成能を有し、有用物質の産生能を示すなど優れた特性を有する上に、多量に存在するものでありながら、形質転換が難しくこれまで十分にその技術が検討されていなかった藻類を、本発明により形質転換することにより、有用物質の大量生産が可能になる。本発明に係る第一のプロモーターは、1ClorDNAウィルスの構造タンパク質をコードする遺伝子の上流に位置する非コード領域を構成するポリヌクレオチド、を有する。ClorDNAウィルスは、珪藻Chaetoceroscf.lorenzianusに感染するウィルスである。これまで藻類、とりわけ海産藻類に対して感染性を示すウィルスの報告例は少なかったが、近年、本発明者らは、ラフィド藻、渦鞭毛藻、珪藻などの藻類から様々なウィルスの分離に成功している。本発明に係るClorDNAウィルスは、本発明者らにより分離された海産藻類感染性ウィルスの一つである。構造タンパク質をコードする遺伝子は、ClorDNAウィルスの構造タンパク質の複製に関与するものであり且つ活発に発現するものであれば特に制限されないものとする。本発明において、コード領域とはmRNAを経てタンパク質に翻訳される部分をいい、非コード領域とはコード領域以外の部分をいう。即ち、非コード領域は、ATGなどの開始コドンの上流に位置する部分をいい、mRNAに転写されない部分の他、mRNAに転写はされるがタンパク質には翻訳されない部分を含むものとする。一般的に、プロモーターは、転写の鍵を握るCoreelementと、転写を促進または抑制するRegulatoryelementを有し、遺伝子を導入する際には、特にCoreelementを利用することが重要である。Coreelementとしては、TATAボックス、イニシエーターエレメントInr、ダウンストリートエレメントなどが知られており、RegulatoryelementとしてはCAATボックスやGATAボックスなどが知られている。本発明者らがClorDNAウィルスのORF領域の上流の塩基配列を調べたところ、CAATボックスIである5’-CAAT-3’、TATAボックスである5’-TATAAA-3’、ACGTAボックスである5’-ACGTA-3’および珪藻類のイニシエーターエレメントInrと思われる5’-TCA1TAAA-3’が見られた。これに関連して、本発明者らは、本発明に係るClorDNAウィルスに近縁なウィルスの1種であるCsetDNAウィルスに由来する、上記Inrを含むプロモーターが、中心目珪藻には働かないことを明らかにしている。この点を考慮すると、本発明に係るポリヌクレオチド1が高い形質転換能を発揮できる理由としては、上記イニシエーターエレメント等以外の未知の配列がCoreelementとして働いている可能性が高いといえる。上記ポリヌクレオチド1としては、配列番号13SEQIDNO:13、配列番号12SEQIDNO:12、配列番号11SEQIDNO:11および配列番号1SEQIDNO:1の塩基配列を有するものを挙げることができる。本発明に係る第二のプロモーターは、2上記ポリヌクレオチド1の1または複数のヌクレオチドが欠失、置換または付加されたポリヌクレオチドであり、且つ任意のタンパク質をコードする遺伝子の発現を藻類細胞内で活性化するポリヌクレオチド、である。上記ポリヌクレオチド2において、欠失、置換または付加されるヌクレオチドの数としては、1以上、200以下が好ましく、1以上、100以下がより好ましく、1以上、70以下がさらに好ましく、1以上、30以下がさらに好ましく、1以上、20以下がさらに好ましく、1以上、10以下がさらに好ましく、1以上、5以下が特に好ましい。本発明に係る第三のプロモーターは、3上記ポリヌクレオチド1配列と相補的な塩基配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェントな条件でハイブリダイズし、且つ任意のタンパク質をコードする遺伝子の発現を藻類細胞内で活性化するポリヌクレオチド、である。上記ポリヌクレオチド3において、ストリンジェントな条件とは、0.1SDSを含む2×SSC中、65°Cでハイブリダイズさせた後、0.1×SSC-0.1SDSで2回洗浄することをいう。上記ポリヌクレオチド2および3において、任意のタンパク質をコードする遺伝子の発現を藻類細胞内で活性化するポリヌクレオチドとは、藻類細胞内に導入されることによって、その下流に結合された任意のタンパク質をコードする遺伝子を発現させることができるものをいう。上記ポリヌクレオチド2および3において、上記ポリヌクレオチド1との相同性としては、50以上が好ましく、70以上がより好ましく、80以上がさらに好ましく、90以上がさらに好ましく、95以上がさらに好ましく、98以上がさらに好ましく、99以上が特に好ましい。上記ポリヌクレオチド1~3は、ClorDNAウィルスまたはその変異体の構造タンパク質をコードする遺伝子の上流から分離することができる。但し、化学的に合成してもよい。これらポリヌクレオチド1~3は、鋳型からPCRにより増幅して用いることができる。本発明に係るベクターは、上記プロモーターと、任意のタンパク質をコードする遺伝子を含有する。ベクターの種類は、藻類細胞へ導入され得るものであれば特に制限されず、プラスミドベクター、ウィルスベクターの何れも用いることができる。但し、藻類、とりわけ海産藻類に感染するウィルスの研究は十分に進んでいるとはいい難いので、好適にはプラスミドベクターを用いる。ここで任意のタンパク質は特に限定されるものではなく、生産の望まれる有用なタンパク質であればよい。本発明に係るベクターには、一般的なベクターに含まれるその他の配列を含んでいてもよい。かかる配列としては、例えば、本発明ベクターが導入された藻類を特定するための選択マーカー遺伝子や、藻類細胞で働くターミネーターを挙げることができる。本発明ベクターの調製方法としては、常法を用いることができる。例えば、上記各配列とドナーベクターとを制限酵素で切断した後にアニーリングし、DNAリガーゼにより結合させればよい。或いは、クロナーゼ反応を利用した簡便な公知方法により、各配列をベクターにクローニングすることも可能である。本発明に係る藻類の形質転換方法は、上記ベクターを調製する工程;および、上記ベクターを藻類細胞へ導入する工程を含むことを特徴とする。本発明ベクターの調製方法は、上述したとおり、当業者公知の方法を用いることができる。本発明ベクターの藻類細胞への導入方法としては、パーティクルガン法、ガラスビーズ攪拌法、マイクロインジェクション法、アグロバクテリウム法、酢酸リチウム法、リン酸カルシウム法、プロトプラスト法などの公知方法を用いることができる。但し、海産藻類の場合、塩濃度の高い培地で増殖せしめる必要があるので、エレクトロポーレーション法は適切でない。本発明ベクターにより形質転換された藻類細胞は、導入されている選択マーカー遺伝子に応じた選択培地で培養することにより特定することができる。以下、実施例を挙げて本発明をより具体的に説明するが、本発明はもとより下記実施例によって制限を受けるものではなく、前後記の趣旨に適合し得る範囲で適当に変更を加えて実施することも勿論可能であり、それらはいずれも本発明の技術的範囲に包含される。実施例1本発明に係るClorDNAウィルスプロモーターの分離1海産藻類に感染するウィルスのゲノムDNAの抽出Tomaru,Yら,AquaticMicrobialEcology,vol50,pp1031122008に記載の方法に従って、中心目珪藻Chaetoceroscflorenzianusを宿主とするChaetoceroslorenzianusDNAウィルスClorDNAウィルスからゲノムを抽出した。具体的には、まず、ウィルス液10mLを0.22μmフィルターMILLIPORE社製,MillexGS,孔径:0.22μmで濾過することにより、藻細胞の破片などを除いた。得られた濾液に40ポリエチレングリコール6000溶液Woko社製を最終濃度が10w/vとなるように加え、4°Cにて一晩静置した。当該液を遠心分離用チューブNalgen社製,UltraBottleAssembliesに移し、超遠心分離機BECKMAN社製,UltracentrifugeL870Mを用いて57,000×g、4°Cで1.5時間遠心分離した後、その上清を除いた。得られた沈殿にリン酸緩衝液10mMリン酸二水素ナトリウム,10mMリン酸水素ナトリウム,pH7.2,5mLを加え混合することによりウィルス粒子を洗浄した。再度、217,000×g、4°Cで4時間遠心分離し、同様に上清を除いた後、得られた沈殿を滅菌した精製水Millipore社製,milliQ登録商標,300μLに溶解した。当該溶液を1.5mL容エッペンドルフチューブに移し、プロテイナーゼKと10サルコシルを、それぞれ最終濃度が1mg/mLおよび1w/vとなるように加え、55°Cにて1.5時間インキュベートした。その後、常法を用いてフェノール/クロロホルム処理とクロロホルム処理を行い、得られた上清に、その10分の1量の3M酢酸ナトリウムpH4.8を加え、さらにその2.5倍量のエタノールを加えた。当該溶液を-80°Cにて1時間静置した。その後、微量高速遠心機KUBOTA社製,KUBOTA3740を用いて14,000rpm、4°Cで10分間遠心分離を行い、得られた沈殿を70エタノールで洗浄した後、乾燥させた。これを滅菌milliQ水20μLに溶解してDNA溶液を得た。2ClorDNAウィルスプロモーターの分離上記1で得たClorDNAウィルスのゲノムDNAの配列情報を、ORFfinderを用いて、それに含まれるORFを検索した後、Blastを用いてデータベースと比較し構造タンパク質のORFを検出した。当該ORF配列の上流における塩基数507の配列を配列番号7SEQIDNO:7に示す。配列番号7の3’末端のATGは、当該ORFの開始コドンである。この配列中の翻訳開始点と思われるATG配列の26塩基上流である第482番目の塩基から第9番目の塩基の領域を、ClP2L/attB1プライマー配列番号2,SEQIDNO:2およびClP2/attB4プライマー配列番号3,SEQIDNO:3を用いたPCR反応により増幅させた。なお、配列番号2SEQIDNO:2における5~29の塩基配列および配列番号3SEQIDNO:3における5~28の塩基配列は、後述するプラスミドの構築のためのBPクロナーゼ反応に必要なattB配列を示す。また、得られたClorDNAウィルスプロモーターの塩基配列を配列番号1SEQIDNO:1に示す。なお、配列番号1の塩基配列における460番目のTは、転写開始点であると考えられる。PCR反応の条件を以下に示す。PCR反応液として、5×バッファーTaKaRa社製,5μL、dNTPMixTaKaRa社製,2μL、PrimeStarHSTaKaRa社製,0.25μL,5U/μL、ClorDNAウィルスのゲノムDNA1μL、および2種のプライマー10pmol/μL,各1μLを混合し、最後に滅菌milliQ水を全量が25μLとなるように添加混合した。次いで、98.0°Cで10秒間、40.0°Cで30秒間、72.0°Cで60秒間のサイクルを30回繰り返し、最後に72.0°Cで5分間反応させた。フラグメントの増幅を確認するために電気泳動を行った。電気泳動には、TAEバッファートリス酢酸緩衝液と、アガロースSニッポンジーン社製1.5ゲルを用いた。電気泳動用試料として、PCR産物各9μLに10×ローディングバッファーTaKaRa社製を1μLずつ添加し、混合したものを用いた。また、DNA分子量マーカーとして100bpラダーTOYOBO社製,コードNo.DNA-030X,2μLを用い、同時に泳動した。また、Mupid電気泳動槽ADVANCE社製を用い、100Vの条件下で約30分間泳動した。泳動終了後、臭化エチヂウムを用い、定法SambrookandRussell2001により染色し、紫外線照射下で写真撮影を行った。実施例2本発明に係るClorDNAウィルスプロモーターを含むベクターの調製1各エントリークローンプラスミドの調製上記実施例1で得たClorDNAウィルスプロモーター、導入遺伝子としてノールセオスリシン耐性遺伝子nat、およびThlassiosirapseudonanaのfcpターミネーターPoulsenNらJornalofPhycology42pp10591065がそれぞれ導入されたエントリークローンプラスミドベクターを、MultisiteGateway登録商標ProKitinvitrogen社製を用いて調製した。詳しくは、プラスミドの構築のためのクロナーゼ反応に必要なattB配列を有する、上記実施例1で得たClorDNAウィルスプロモーター溶液を、HighpurePCRCleanupMicroKitを用いて、その取り扱い説明書に従って精製した。次に、当該溶液50fmolesとドナーベクターinvitrogen社製,pDONR221P1-P4,100ng/μLを混合し、当該溶液へ滅菌milliQ水を加えることにより計8μLの混合液とした。なお、当該ドナーベクターは、プラスミドの構築のためのBPクロナーゼ反応に必要なattP配列を有する。当該混合液へ、さらにBPクロナーゼ商標IIEnzymeMixinvitrogen社製,2μLを加えて混合し、25°Cで1時間反応させた。その後、反応液にプロテイナーゼKinvitrogen社製,1μLを加え、37°Cで10分間処理した。当該反応液2.5μLを、OneShotMach1T1登録商標chemicallycompetentcellsinvitrogen社製,25μLに混合し、氷上にて30分間静置した。その後、42°Cにて30秒間ヒートショック処理を行い、直ちに氷上に移し、2分間静置した。次いで、SOCinvitrogen社製,250mLを加え、37°Cにて1.5時間振とう培養した。培養した菌液275μLを、50μg/mLカナマイシンを含むLB寒天培地1トリプトン,0.5イーストエクストラクト,1NaCl,1.5アガーに塗抹した。当該培地をマルチシェーカーオーブンタイテック社製内で37°Cにて一晩10時間程度倒置培養した。得られたコロニーは、白金耳を用いてLB液体培地10mLに植菌し、37°Cにて一晩振とう培養した。当該培養液3mLより、PureYieldPlasmidMiniprepSystemPromega社製を用いて、LRクロナーゼ反応に必要なattL配列を有するClorDNAウィルスプロモーターが導入されたエントリークローンプラスミドを抽出した。また、プラスミドの構築のためのBPクロナーゼ反応に必要なattB配列を有するノールセオスリシン耐性遺伝子natを上記実施例1と同様に増幅し、上記と同様にしてBPクロナーゼ反応に必要なattP配列を有するドナーベクターであるpDONR221P4r-P3rへ導入し、LRクロナーゼ反応に必要なattL配列を有する抗生物質耐性遺伝子が導入されたエントリークローンプラスミドを得た。さらに、プラスミドの構築のためのBPクロナーゼ反応に必要なattB配列を有するThalassiosirapseudonanaのfcpターミネーターを上記実施例1と同様に増幅し、上記と同様にしてBPクロナーゼ反応に必要なattP配列を有するドナーベクターであるpDONR221P3-P2へ導入し、LRクロナーゼ反応に必要なattL配列を有するターミネーターが導入されたエントリークローンプラスミドを得た。2ディスティネーションプラスミドの調製GatewayVectorConversionSystemwithOneShotccdBSurvival登録商標CompetentCellsinvitrogen社製を用いて、pBluescriptSKStratagene社製へLRクロナーゼ反応に必要なattR配列を持つReadingFrameCasetteを組み込むことにより、ディスティネーションプラスミドを調製した。まず、pBluescriptSK2μgに対し、制限酵素EcoRI20UTOYOBO社製,10U/μLを用いて、37°Cにて3時間消化した。当該反応液へ常法に従ってエタノールを添加することにより、DNAを沈殿させて回収した。次に、T4DNAポリメラーゼを用いて末端を平滑化した。即ち、回収したDNAへ、10×バッファー5μL、2.5mMdNTPTAKARA社製,2μL、T4DNAポリメラーゼTOYOBO社製,0.5U/μL,1μLおよび滅菌milliQ水42μLを加え、計50μLとなるように反応液を調製した。この反応液を12°Cにて15分間インキュベートした。この反応液に滅菌milliQ水350μLを直ちに加え、常法に従ってフェノール/クロロホルム処理とクロロホルム処理をした後、続いてエタノール沈殿を行ってDNAを回収した。次に、制限酵素にて切断したプラスミドの再環状化を防ぐために、CIAPTaKaRa社製,CalfintestineAlkalinePhosphataseを用いて、その切断断片の5’末端の脱リン酸処理を行った。平滑化処理を施したDNAに10×CIAPバッファー5μLとCIAP0.1U/μL,1μLを加え、滅菌milliQ水により計50μLになるように反応液を調製した。当該反応液を37°Cにて15分間、続いて56°Cにて15分間インキュベートした後、CIAP0.1U/μL,1μLを再び加え、37°Cにて15分間、続いて56°Cにて15分間インキュベートした。当該反応液に、10SDS溶液2.5μL、500mMEDTA溶液0.5μL、プロテイナーゼK溶液を2枚重ねることにより、Heガス圧1350psiで細胞に打ち込んだ。次いで、ノールセオスリシン500μg/mLを含む03アガロースHGS高強度アガロース、和光純薬工業社製f/2培地にて当該細胞を培養し、全細胞数1×108当たりのコロニー数を計測した。結果を表1に示す。また、上記抗生物質含有培地で生育した細胞のコロニーが形質転換していることを、PCRにて確認した。生育した細胞のコロニーを100mLの培地を用いて培養し、藻類細胞を回収した後、DNA抽出キットGiagen社製,DNeasy登録商標PlantMiniKitを用い、ゲノムDNAを抽出した。得られたゲノムDNAを鋳型とし、C1P2プロモーターに特異的なプライマー配列番号5,SEQIDNO:5および導入した抗生物質遺伝子natに特異的なプライマー配列番号6,SEQIDNO:6と、MightyAmp商標DNAPolymeraseTakara社製を使ってPCRを行った。PCR反応の条件は、基本的には上記実施例12と同様とし、サイクル数は30サイクル、アニーリング温度は55°Cとした。得られた増幅DNAを分析した電気泳動写真を図3に示す。図3中、Mは分子量マーカーであり、1~4は本発明に係るプロモーターと抗生物質遺伝子natを含むプラスミドベクターで形質転換した株のレーン、5は本発明に係るプロモーターと抗生物質遺伝子natを含むプラスミドベクターを用いた陽性対照のレーン、6はChaetocerossp.の野生株を用いた陰性対照レーンである。実験結果の考察1形質転換能について上記実施例3の結果のとおり、プロモーターを導入しない場合には形質転換体が得られず、また、従来型ウィルスプロモーターを用いた場合には、僅かに形質転換体が得られた。それに対して、本発明に係るプロモーターを用いた場合には、10倍以上もの形質転換体を得ることができる。よって、本発明に係るプロモーターは、高効率に海産藻類を形質転換可能と考えられる。2本発明プロモーターの塩基配列について一般的に、真核生物のプロモーター領域には、転写を開始させる転写結合因子が結合するコアプロモーター領域と、その上流に位置する遺伝子転写調節領域が存在する。ウィルスプロモーターにおいても同様に、TATAボックス5’-TATAWAW-3’式中、WはAまたはTを表すやイニシエーターエレメントInrといった真核生物のコアプロモーター領域によく見られるモチーフ配列が存在することが知られている。このことを踏まえ、本発明プロモーターの配列1をPLACESignalScanSearchhttpwwwdnaaffrcgojpPLACEを用いて解析し、比較した。その結果、配列番号1の本発明プロモーターに、TATAボックス配列番号1中、285~289、ACGTAボックス配列番号1中、337~341、および珪藻類のイニシエーターエレメントと考えられる5’-TCAT1AAA-3’配列番号1中、457~463を見出した。このイニシエーターエレメントは、哺乳類の5’-YYA1NWYY-3’式中、WはAまたはTを示し、YはCまたはTを示す。以下、同じJavahery,R.ら,MolecularandCellularBiology,14,pp.1161271994、卵菌類の5’-YCA1TTYY-3’Mcleod,Aら,EukaryoticCell,3,pp.91992004、ショウジョウバエの5’-TCA1KTY-3’式中、KはGまたはTを表すPurnell,B.A.ら,GenesDevelopment,8,pp.8308421994、トリコモナスの5’-TCA1YW-3’Liston,D.R.ら,MolecularandCellularBiology,19,pp.238023881999など、他の生物のInr配列とはやや異なる。これに関連して、本発明者らは、本発明に用いたClorDNAウィルスに極めて近縁なウィルスの1種であるCsetDNAウィルスに由来する、上記Inrを含むプロモーターが、珪藻の中心目種には働かないことを明らかにしている。この点を考慮すると、本発明に係るポリヌクレオチド1が高い形質転換能を発揮できる理由として、イニシエーターエレメント以外の未知の配列が、Coreelementとして働いている可能性が高いと考えられる。以下、さらに実験を進めた。実施例4プロモーターの重要部位の特定1ClorDNAウィルスプロモーターの分離上記実施例12のPCRにおいてプライマーを表2のものに変更した以外は同様にして、構造タンパク質のORFの上流配列中から長さの異なる3種の配列を調製した。なお、表2中のアニーリング部位は、ORF配列の上流配列である配列番号7SEQIDNO:7中における塩基番号を示す。具体的には、3’側のプライマーとしてClP2R/2/attB4を用い、5’側のプライマーとして表2中の1から3番目のプライマーを用い、長さの異なるClorDNAウィルスプロモーターDNAを得た。以下、得られたDNAを、長いものからプロモーター1,2,3という。2プラスミドベクターの調製上記実施例2と同様にして、上記1で得られたClorDNAウィルスプロモーターDNAが導入されたプラスミドベクターを調製した。また、比較のため、中心目珪藻Thalassiosirapseudonanaの内在性プロモーターを含むベクターと、プロモーターを含まないベクターも同様に調製した。3形質転換実験上記2で得られたプラスミドベクターを用い、上記実施例3と同様にして中心目珪藻Chaetocerosspの形質転換実験を行い、全細胞数5×108当たりのコロニー数を計測した。実験は各3例行った。結果を表3に示す。表3に示す結果のとおり、上記1で調製したClorDNAウィルスプロモーターDNAのうち、中程度の長さのプロモーター2配列番号12;配列番号7中、第281から第507番目の塩基配列で十分な形質転換効率が示された。一方、最も短いプロモーター3配列番号7中、第424から第507番目の塩基配列;配列番号12中、第144から第230番目の塩基配列では、全く活性が見られなかった。従って、配列番号12の第1から第143番の塩基配列配列番号13の中に、藻類の形質転換に重要な配列が含まれていると考えられる。また、長いプロモーター1配列番号11;配列番号7中、第9から第507番目の塩基配列では、さらに高い形質転換効率が得られた。従って、配列番号7中、第9から第280番目の塩基配列には、藻類の形質転換に補助的役割を示す配列が含まれていると考えられる。以上のとおり、配列番号13のプロモーターには、藻類の形質転換を行う上で非常に重要な配列が含まれており、また、配列番号12のプロモーターは、藻類の形質転換に非常に有用であり、配列番号11のプロモーターは、さらに形質転換効率の高いものであることが明らかにされた。実施例5プロモーターの重要部位の特定配列番号12のプロモーターを導入したプラスミドベクターを用い、中心目珪藻に加えて羽状目珪藻についても形質転換実験を行った。即ち、上記実施例3と同様にして、表4に示す珪藻を形質転換した。全細胞数1×108当たりのコロニー数を計測した。実験は各3例行った。また、陰性対照として、プロモーターを有さないプラスミドベクターを用い、同様に実験を行った。結果を表4に示す。表4の結果のとおり、珪藻は羽状目珪藻と中心目珪藻に大きく分類されるところ、従来のプロモーターの特異性が高いのに対して、本発明に係るプロモーターは特異性が低く、様々な珪藻の効率的な形質転換に幅広く用いられ得ることが示された。"