表面修飾されたポリマーの製造方法であって、以下の工程:a.プラズマ処理されたポリマーを提供する工程、b.脂肪酸のソホロリピドを工程aで得られたプラズマ処理されたポリマー表面に共有結合させる工程、c.工程bで得られたポリマー表面を抗菌剤の溶液にさらし、煮沸してソホロリピドによって表面上で抗菌剤のイオンをナノ粒子に還元して、表面修飾されたポリマーを得る工程、を含むことを特徴とする方法。工程bで使用されるソホロリピドが脂肪酸由来の脂質であって、還元糖部分を有し、前記脂肪酸はステアリン酸、オレイン酸、リノール酸及びリノレン酸から選択されるがそれらに限定されず、前記糖部分は好ましくはソホロース、ラムノース及びトリハロースである、請求項1に記載の方法。工程aで使用されるポリマーがポリエーテルイミド及びポリエチレンからなる群から選択される、請求項1に記載の方法。工程cで使用される抗菌剤が硝酸銀である、請求項1に記載の方法。前記表面修飾されたポリマーが微生物の増殖を抑制するのみでなく、細胞増殖を増進する、請求項1に記載の方法。工程aのプラズマ処理されたポリマーが、任意に更に金属ナノ粒子、好ましくは金を付着させる工程及びアミノ酸を金属ナノ粒子に付着させ、表面修飾されたポリマーを得る工程を含む、請求項1に記載の方法。前記アミノ酸がリジンである、請求項6に記載の方法。表面修飾されたポリマーが微生物の増殖を抑制するのみでなく、細胞増殖を増進する、請求項6に記載の方法。本発明の主な目的は、細胞増殖を増進し、微生物の増殖を抑制する、表面修飾されたポリマーの製造方法を提供することである。本発明の別の目的は、細胞増殖の増進方法を提供することである。本発明の更なる目的は、生じる細胞増殖の培地として機能し、同時に細菌の増殖を抑制する、表面処理されたポリマー組成物を提供することである。更なる目的は前記組成物及び本発明の方法を使用して人工の体内組織及び臓器を作ることである。本発明のもう一つの目的は、本明細書で上述したようにリザーバとして機能し得る表面処理されたポリマーから成形品を作ることである。従って、本発明は、細胞増殖を増進し、微生物の増殖を抑制する表面修飾されたポリマーの製造方法を提供する。本発明の一つの態様において、表面修飾されたポリマーの製造方法であって、前記方法が、a.プラズマ処理されたポリマーを提供する工程、b.脂肪酸のソホロリピドsophorolipidを工程aで得たプラズマ処理された多孔性ポリマー表面に共有結合させる工程、c.工程bで得たポリマー表面を抗菌剤の溶液にさらし、煮沸してソホロリピドによって表面上で抗菌剤のイオンをナノ粒子に還元して、表面修飾されたポリマーを得る工程、を含む方法に関する。本発明の別の態様において、工程bで使用されるソホロリピドは脂肪酸由来の脂質であり、還元糖部分を有し、前記脂肪酸はステアリン酸、オレイン酸、リノール酸及びリノレン酸から選ばれるがそれらに限定されず、前記糖部分は好ましくはソホロース、ラムノース及びトリハロースtrihaloseである。本発明の別の態様において、工程aで使用されるポリマーはポリエーテルイミド及びポリエチレンからなる群から選択される。本発明の別の態様において、工程cで使用される抗菌剤は硝酸銀である。本発明の別の態様において、前記表面修飾されたポリマーは、微生物の増殖を抑制するのみでなく、細胞増殖を増進する。本発明の別の態様において、工程aのプラズマ処理されたポリマーは、任意に更に金属ナノ粒子、好ましくは金を付着させる工程及びアミノ酸を金属ナノ粒子に付着させ、表面修飾されたポリマーを得る工程を含む。本発明の別の態様において、前記アミノ酸はリジンである。発明の別の態様において、表面修飾されたポリマーは、微生物の増殖を抑制するのみでなく、細胞増殖を増進する。本発明において、プラズマ処理ポリマーの組成物及び機能化金属ナノ粒子が提供される。特に、前記組成物はプラズマ処理されたポリマー及び前記金属ナノ粒子を機能化する少なくとも2つのアミン基を有するアミノ酸を含む。本発明の一つの態様において、前記組成物はアミノ酸及びプラズマ処理されたポリマーを含む。本発明のポリマーはプラズマ処理に対して安定している。前記ポリマーは任意に多孔性又は無孔である。好ましい態様は多孔性のポリエチレン及びポリエーテルイミドである。前記金属は金、銀、白金及びそのようなものから選択されるがそれらに限定されない群を含む貴金属から選択される。本発明の一つの態様において、前記組成物はプラズマ処理されたポリマー及び非金属を含む。前記プラズマ処理はO2、COO、N2、NO2、H2、SO2H2、NH3及びそのようなものから選択されたガスを使用してなされる。金属ナノ粒子の機能化は、アルギニン、リジン及びそのようなものから選択されるがそれらに限定されない、少なくとも2つのアミン基を有するアミノ酸を使用して実施される。ポリマーの組成物、金属ナノ粒子の製造及びそれらの機能化のための本発明の方法は、以下の工程、1.プラズマ、好ましくはN2及びH2プラズマ、を使用してポリマー表面をプラズマ処理する工程、2.金属、好ましくは金、ナノ粒子を前記プラズマ処理された表面に付着させる工程、及び3.アミノ酸、好ましくはリジン、分子を前記金ナノ粒子に付着させる工程、を含む。接触角は最初は110度であり、工程1においては細胞増殖が増えると共に角度は65度に減り、工程2の後に角度はわずか45度であり、細胞増殖が非常に高くなると共に25°への角度の更なる減少が見られる。図1を参照のこと。表面修飾を有するポリマーの組成物は改善された固定及び安定性と共に改善された細胞の統合を有するであろう。細胞増殖を増進する組成物はまた、増大した表面湿潤性及び表面における細胞の増進した接着及び増殖を有するだろう。本発明の一つの態様においては、プラズマ安定ポリマーは多孔性であり、その増進した増殖のために細胞を蒔かれる。本発明の好ましい態様において、多孔性ポリマーはランゲルハンス島の細胞を蒔かれる。本発明において、抗菌剤を有する表面処理された多孔性ポリマー組成物が本明細書に開示されている。前記抗菌剤を有する表面処理された多孔性ポリマー組成物は細胞増殖に役立つ。前記抗菌剤を有する表面処理された多孔性ポリマー組成物は細胞増殖に役立つと同時に微生物の増殖を抑制する。前記抗菌剤を有する表面処理された多孔性ポリマー組成物はポリマー、抗菌剤及び脂肪酸のソホロリピドを含む。本発明は更に、抗菌剤を有する表面処理された多孔性ポリマー組成物の製造方法を開示する。本発明の表面処理された多孔性ポリマー組成物の製造方法は、以下の工程a多孔性ポリマーをプラズマで処理する工程、b脂肪酸のソホロリピドをプラズマ処理された多孔性ポリマー表面に共有結合させる工程、c工程bのポリマー表面を抗菌剤の溶液にさらし、煮沸してソホロリピドによって表面上で抗菌剤のイオンをナノ粒子に還元する工程、を含む。本発明の表面処理された多孔性ポリマー-抗菌剤組成物中のポリマーはあらゆるポリマーであり、好ましくはポリエチレンである。本発明の抗菌剤はイオン又は金属形態の遷移金属であり、好ましくは硝酸銀である。プラズマ処理の選択肢はN2及びH2、酸素、二酸化炭素、二酸化硫黄-水素プラズマ及びそのようなものから選択される。脂肪酸由来であり還元糖部分を有する脂質が、本発明の脂質である。前記脂肪酸はステアリン酸、オレイン酸、リノール酸及びリノレン酸型であるが、それらに限定されない。前記糖部分は好ましくはトホロース、ラムノース、トリハロース及びそのようなものである。本発明の表面処理された多孔性ポリマー-抗菌剤組成物は、融合された粒子のネットワークであり、400~1000ミクロンに形成され、100~150ミクロンの孔径を有する成形品である。以下の実施例は、好ましい態様を含んでおり、本発明の実施を説明するのに役立ち、示される詳細は例示の目的及び本発明の好ましい態様を解説する議論の目的であることが理解される。実施例1:PEフィルムのプラズマ処理表面修飾の方法において、PE足場の一部をN2及びH2ガスを含むプラズマにさらした。前記プラズマを、水素及び窒素ガス比7:3を電子サイクロトロン共鳴ECR反応チャンバーに導入することによって励起した。ECRプラズマを、電磁石によって生み出した875ガウスの必要な磁場と共にTE11モードにおいて2.45GHzのマイクロ波源によって励起した。ECRキャビティは高さ15cm、直径12.5cmの円筒形のステンレス鋼チャンバーからなり、30cmの高さ及び20cmの直径を有する反応チャンバーに繋がれる。反応チャンバーをガス注入口、真空ポート、試料容器ポート及びフィードスルーfeedthroughsのような様々なポートで容易化した。500Wマイクロ波源を石英窓を通して空洞共振器に繋いだ。基礎圧力は106mbar104Pa、操作圧力は102mbar1Paであった。全てのフィルムをエタノールでよく洗浄してから処理した。20分の曝露は、続く金ナノ粒子GSPの付着のための固着部位として作用するアミン基を表面上に導入した。実施例2:GNPの層形成それぞれの足場を2回又は3回脱イオン水で洗浄して、表面上に存在するあらゆる不純物を除去した。更に洗浄した足場を70アルコール中に15分浸して完全な殺菌を確実にした。これらの足場を無菌条件下において殺菌した金ゾル中に浸した。実施例3:リジン分子によるGNP層を形成された足場の修飾リジンの104M溶液を脱イオン水に新しく調製した。GNP層を形成された足場をこの溶液に浸して一晩維持し、さらされたGNP表面へのリジン分子の完全な付着を確実にした。実施例4:細胞成長及び増殖加湿した5CO2/95空気雰囲気において37°Cで10v/vウシ胎仔血清FCS及びペニシリン-ストレプトマイシンを補充したダルベッコ変法イーグル培地DMEMを含む細胞培養フラスコファルコン中で、CHO中国ハムスター卵細胞系統細胞を維持及び培養した。細胞をリン酸緩衝生理食塩水PBSで洗浄し、トリプシン処理0.5トリプシン溶液によって引き離し、遠心分離によって回収した。その後、細胞を既知の体積の培地中に105細胞/mLの最終濃度で再懸濁した。細胞の倍加時間を、基質上に105細胞/mLの濃度で細胞を蒔き、5CO2を用いて37°Cで培養することによって計算した。典型的な実験では、それぞれの足場を脱イオン水で十分に洗浄し、余分なリジン分子を除去し、70アルコールで殺菌し、層状のチャンバーの気流中で乾燥して、12穴培養プレート中に注意深く置いた。足場の処理された側を上に向かせた。100μLの再懸濁させた細胞懸濁液をゆっくりと足場の表面上に蒔いた。細胞をフィルムの表面に付着させ、10~15分後、配置を乱さずに1mLのDMEMを穴の壁に沿って加えた。加湿した5CO2/95空気雰囲気において37°Cで24時間及び48時間細胞を培養した。一定の間隔で任意の顕微鏡写真を撮影して細胞増殖を観察した。実施例5:オレイン酸及びリノール酸ソホロリピドの合成SpencerJFTGorinPAJTullochAPAntonieVanLeeuwenhoek197036129に記載されているように、カンジダボンビコラCandidabombicola、ヤロウイアリポリチカYarrowialipolytica、カンジダアピコラCandidaapicola及びカンジダボゴリエンシスCandidabogoriensisを使用する、オレイン酸及び/又はリノール酸のような脂肪酸の生体内変換によってソホロリピドを調製した。実施例6:pPE足場の組立狭く分散させたslogD90D10012線状の高密度ポリエチレン小球のマイクロ-小球中央粒子径、D50~380ミクロン:平均粒子径~426ミクロンを注文品の型custommademouldsにおいて160°Cで焼結し、平均孔径~208ミクロン及び空隙率~46を有する多孔性ポリエチレン足場を生じた。これらの多孔性ポリエチレン足場は、主に上顎-顔部位におけるインプラントとして臨床診療において広く使用されている多孔性ポリエチレン足場と大雑把に比較できた。結果は図2、3に見られる通りである。実施例7オレイン酸ソホロリピドOA-SL及びリノール酸ソホロリピドLA-SLの足場への付着。第一工程において、ポリマー足場をN2及びH2プラズマで5分処理した。その後、以下に記載するように、オレイン酸ソホロリピドOASL/リノール酸ソホロリピドLASL分子を足場上に共有結合的に縫ったstitch。1.5cm2の大きさのpPE足場を、100/200mgの触媒1-エチル-3-3-ジメチルアミノプロピル-カルボジイミドEDCI及び5mLのジクロロメタンDCM/ジメチルホルムアミドDMFの存在下において100mgのOA-SL/LA-SLと共に丸底フラスコに入れ、連続的に攪拌して32時間還流した。反応が完了した後、上清をデカントし、足場を分離し、DCM/DMF/酢酸エチルで数回洗浄して、真空下で乾燥器において乾燥した。実施例8:銀ナノ粒子の形成実施例3に見られるようにその表面に共有結合的に縫われたOA-SL及びLA-SLを有する足場を、煮沸条件下で1mLの1MKOHpH~11を含む50mLの103MAgNO3溶液にさらした。SL分子によってAgイオンを還元して銀ナノ粒子へ変換した。SL分子はポリマー足場に共有結合されているので、銀ナノ粒子がちりばめられた3D足場が生じる。これは、そうでなければ白色の足場上での茶色がかった色の発達によって示唆される。比較例:未処理の足場及びプラズマ処理された足場を含む比較実験も実施し、AgイオンのAg0への還元は生じなかった。これは化学的に縫われたSL分子はこの反応においてキャッピング剤cappingagentであるのみでなく還元剤であることを示唆する。水接触角をそれぞれのレベルで測定した。図8は未処理のpPE足場は接触角110度の高い疎水性であることを示す。この値は我々が足場をプラズマ及びソホロリピドで処理するにつれて大幅に減少していく。これらのソホロリピドは本質的に投げ縄-両親媒性bolaamphiphilicなので、足場上のその存在はその表面を疎水性から親水性に変える。SLソホロリピド分子がポリマー表面に共有結合的に縫われるとき、脂質の-COOH基とポリマー表面上の-NH2基との間で反応が起き、脂質の別の末端、すなわちソホロース、をさらす。これは表面を親水性にし、同じことが、110度未処理のポリマー足場から65度プラズマ処理、45度SL付着へと変化する水接触角に反映されている。ポリマー足場上の銀ナノ粒子のその場形成の後、これは25度まで更に減少する。細胞接着及び増殖についての更なる研究が、親水性である表面を必要としているので、これは良い兆候である。実施例9:抗菌性分析ルリアベルターニ寒天斜面上で3種の微生物全てを維持した。上記菌種のプレ接種材料Preinoculumsを100mLのルリアベルターニ培地に別々に接種し、更なる実験を実施するために24時間培養した30°C、200rpm。銀がちりばめられた足場の抗菌性試験を標準希釈ミクロ法standarddilutionmicromethodを用いて実施した。108cfu/mLを含む培地を連続的に希釈して104cfu/mLを得た。典型的な実験において、104cfu/mLを含むLB培養液を含む5本の試験管を未処理のpPE足場、プラズマ処理されたpPE足場、OA-SL/LA-SL含有pPE足場及びAgNPsを含む足場と共に培養した。5本目の試験管をいずれの足場もなしに培養し、対照とした。すべての組立setupを振盪条件200rpmにおいて37°Cで培養した。75μLのアリコートaliquotを上記セットのそれぞれから一定間隔で汲み出し、ルリアベルターニ寒天プレート上に蒔いた。これらのプレートをまた37°Cで24時間培養し、手作業でコロニーを数えた。細菌細胞生存率を以下の式に従って計算した。細胞生存=100Ne/Nc1式中、Ne=実験プレート上の生存細菌コロニーの数Nc=対照プレート上の生存細菌コロニーの数図9は、異なる時間間隔後のIpPE-NH2足場;IIpPE-NH2-SL足場及びIIIpPE-NH2-SL-Ag足場に対する枯草菌A、緑膿菌B及び黄色ブドウ球菌Cの細胞生存を表す統計データを指す。