試料を内部に有する試料容器を底面において圧接保持するための光透過性を有する第一包装容器本体部と、当該第一包装容器本体部を封止する光透過性を有する第一包装容器蓋部と、当該第一包装容器蓋部により封止された前記第一包装容器本体部を底面において圧接保持する光透過性を有する第二包装容器本体部と、当該第二包装容器本体部を封止する光透過性を有する第二包装容器蓋部とを有することを特徴とする包装容器。請求項1に記載の包装容器において、前記第一包装容器蓋部は、前記第一包装容器本体部の蓋部と、前記試料容器の蓋部を兼ねており、当該第一包装容器蓋部が当該第一包装容器本体部を封止することで、前記試料容器が封止されることを特徴とする包装容器。請求項1に記載の包装容器において、前記試料容器底部及び前記第一包装容器本体部底部及び前記第二包装容器本体部底部が、前記第一包装容器蓋部の前記第一包装容器本体部への押し付け力及び第二包装容器蓋部の前記第二包装容器本体部への押し付け力により圧接保持されていることを特徴とする包装容器。請求項1に記載の包装容器において、前記光透過性を有することで観察可能であることを特徴とする包装容器。請求項1に記載の包装容器において、前記第一包装容器本体部底面に凹部を有し、前記第一包装容器本体部底面及び前記凹部の底面にマークを形成したことを特徴とする包装容器。請求項1に記載の包装容器において、前記第一包装容器本体部および前記第二包装容器本体部の素材が、前記試料容器と同一であることを特徴とする包装容器。請求項1に記載の包装容器において、前記第一包装容器本体部外周側面にネジ部を有し、前記第一包装容器蓋部の内部側面にネジ受部を有することを特徴とする包装容器。請求項1に記載の包装容器において、前記第二包装容器本体部外周側面にネジ部を有し、前記第二包装容器蓋部の内部側面にネジ受部を有することを特徴とする包装容器。請求項1に記載の包装容器において、前記第一包装容器蓋部の、前記試料容器及び前記第一包装容器本体部との当接部に、弾性部材を設けたことを特徴とする包装容器。請求項1に記載の包装容器において、前記第一包装容器蓋部及び第二包装容器蓋部の一部に気体透過性膜が形成されていることを特徴とする包装容器。請求項1に記載の包装容器において、前記第一包装容器蓋部は、当該蓋部表面に少なくとも2つの穴部を有し、当該穴部を塞ぐ栓を有することを特徴とする包装容器。請求項1に記載の包装容器において、前記試料容器の底部外表面に凸部を複数備え、前記第一包装容器本体部底部に当該凸部を嵌め込む凹部が形成されていることを特徴とする包装容器。試料を内部に有する試料容器と、当該試料容器を封止する光透過性を有する試料容器蓋部と、当該試料容器を底面において保持する光透過性を有する第一包装容器本体部と、当該第一包装容器本体部を封止する光透過性を有する第一包装容器蓋部とを有し、当該第一包装容器蓋部の前記第一包装容器本体部への封止力により、前記試料容器底部外表面と、前記第一包装容器本体部底面とが圧接していることを特徴とする包装容器。請求項13に記載の包装容器において、前記試料容器が当該包装容器に格納された状態で前記試料容器内の試料に対して光を照射し観察可能であることを特徴とする包装容器。請求項13に記載の包装容器において、前記第一包装容器本体部底面に凹部を有し、前記第一包装容器本体部底面及び前記凹部の底面にマークを形成したことを特徴とする包装容器。請求項13に記載の包装容器において、前記第一包装容器本体部の素材が、前記試料容器と同一であることを特徴とする包装容器。請求項13に記載の包装容器において、前記第一包装容器本体部外周側面にネジ部を有し、前記第一包装容器蓋部の内部側面にネジ受部を有することを特徴とする包装容器。請求項13に記載の包装容器において、前記第一包装容器本体部の内部側面、及び前記試料容器外表面にネジ構造を夫々備えることを特徴とする包装容器。試料を内部に有する試料容器を底面において圧接保持する光透過性を有する第一包装容器本体部と、当該第一包装容器本体部を封止する光透過性を有する第一包装容器蓋部と、当該第一包装容器蓋部により封止された前記第一包装容器本体部を底面において圧接保持する光透過性を有する第二包装容器本体部と、当該第二包装容器本体部を封止する、光透過性を有する第二包装容器蓋部とを有する包装容器を載置台に載置し、当該包装容器に対して光を照射し、当該包装容器を透過した光を検出することを特徴とする試料観察方法。請求項19に記載の試料観察方法において、前記試料容器の底部及び前記第一包装容器本体部底部及び前記第二包装容器本体部底部が密着していることを特徴とする試料観察方法。特許文献1に記載の方法では、輸送時に滅菌物である生体試料が汚染される危険性は低い。一方、輸送中における温度条件、輸送環境等によっては、細胞にダメージが生じる可能性がある。そのため、輸送後に出来るだけ早く輸送された生体試料を観察検査することが望まれるが、輸送後の生体試料の状態を観察等するためには、滅菌袋を開封し、培養容器を露出させて、位相差顕微鏡等の光学顕微鏡等で細胞を観察する必要がある。このとき、輸送先である医療機関、研究機関等にCPCの様な無菌状態を維持できる細胞処理施設が無ければ、無菌状態ではない検査室等において観察等することになる。これはすなわち、培養容器を汚染空間に曝すことを意味する。このように汚染空間に培養容器を曝すことは、培養容器に菌等が付着し汚染される可能性を示唆している。清潔な環境である手術室等の処理施設内に当該容器を持ち込む際にエタノール消毒等したとしても、全ての付着物を除去できるとは限らない。このように菌や粒子等が付着した可能性の有る状態で、培養容器を手術室等に持ち込み、培養容器から生体試料を取り出すと、培養容器の蓋を開ける際に、除去しきれなかった菌や粒子等が落下して生体試料に付着、或いは培地内に入ると、生物学的汚染が生じる可能性がある。また、特許文献2の方法においても、輸送中、培養容器から培地が漏出する可能性がある。培養容器の蓋部は通常、空気を取り込むために蓋部と容器本体部との間に隙間を設けている。このため、当該隙間より輸送中に培地の漏出する可能性がある。輸送中に培地が漏出した場合、生体試料を取り出す際に培地を介して、生物学的汚染が生じる。このように、汚染された培養容器内の生体試料を観察、検査し、手術室等に持ち込むと、上記と同様に生物学的汚染の生じる可能性がある。上述したように、再生組織等の生体試料を輸送する包装容器において、清浄性を維持する機能が必要である。そのために、輸送中の培地の漏出を回避する必要がある。また、輸送後、清浄性を維持したまま、非侵襲的な生体試料の検査が可能である必要がある。さらに、治療時に輸送した生体試料を取り出す時には、清浄な状態を維持したまま開封する技術が必要である。よって、本発明は、密封性、清浄性を実現し、非侵襲的な検査を実施することが可能な包装容器を提供することを、目的とする。上記の目的を達成するために、本発明は、その一例として以下の構成を有する。本発明の包装容器は、試料を内部に有する試料容器を底面において圧接保持する光透過性を有する第一包装容器本体部と、当該第一包装容器本体部を封止する光透過性を有する第一包装容器蓋部と、当該第一包装容器蓋部により封止された前記第一包装容器本体部を底面において圧接保持する光透過性を有する第二包装容器本体部と、当該第二包装容器本体部を封止する光透過性を有する第二包装容器蓋部とを有することを特徴とするものである。また、本発明の包装容器は、試料を内部に有する試料容器と、当該試料容器を封止する光透過性を有する試料容器蓋部と、当該試料容器を底面において保持する光透過性を有する第一包装容器本体部と、当該第一包装容器本体部を封止する光透過性を有する第一包装容器蓋部とを有し、当該第一包装容器蓋部の前記第一包装容器本体部への封止力により、前記試料容器底部外表面と、前記第一包装容器本体部底面とが圧接していることを特徴とするものである。本発明の試料観察方法は、試料を内部に有する試料容器を底面において圧接保持する光透過性を有する第一包装容器本体部と、当該第一包装容器本体部を封止する光透過性を有する第一包装容器蓋部と、当該第一包装容器蓋部により封止された前記第一包装容器本体部を底面において圧接保持する光透過性を有する第二包装容器本体部と、当該第二包装容器本体部を封止する、光透過性を有する第二包装容器蓋部とを有する包装容器を載置台に載置し、当該包装容器に対して光を照射し、当該包装容器を透過した光を検出することを特徴とするものである。本発明に係る包装容器によれば、清浄性を維持した状態で試料を輸送し、輸送後において、清浄性を維持したまま、輸送した全てのサンプルに対し、生体試料の状態の非侵襲的な検査が可能となる。図1、図2を用いて包装容器の基本的な構成要素を説明する。再生組織等の生体試料120の入った培養容器104は、第一包装容器本体部103および蓋部101と、第二包装容器本体部203および蓋部201により、二重に包装される。第一包装容器本体部103および第二包装容器本体部203に関し、素材と光学特性は、培養容器104と同一のものが好ましい。同一のものを使用することにより、屈折率等の光学特性も同一となり、顕微鏡画像が鮮明となる。それぞれの蓋部については、同一素材を用いても良いし、異なる素材を用いてもよいが、顕微鏡視野を明るくするため、顕微鏡の照明光を透過することは必要である。また、同一素材を用いることで滅菌処理による無菌化が一元的に可能となる。例えば、培養容器がポリスチレンを素材とする場合、第一および第二包装容器本体部および蓋部も同素材であると、使用時において、事前にγ線照射による滅菌処理を実施し、無菌化することができる。上記ではポリスチレンを例にしたが、光透過性を有し、生体試料にとって有害とならない素材であれば、適用可能であることは云うまでもない。図1Aは第一包装容器蓋部101を示している。第一包装容器蓋部101は、培養容器104内の培地の漏出を防ぐためにシリコーン、ゴム等の第一弾性部材102を有する構成とすることも可能である。第一弾性部材102は、γ線照射等による滅菌処理が可能で、有害物質等を発することのない、医療用途の品質のものが好ましい。当該第一弾性部材102は容器素材よりも軟質のものが好ましく、後述する培養容器104を第一包装容器本体部103に圧着させる際、適度な押圧力で培養容器104を第一包装容器本体部の底面部に押しつけることが可能となる。また、第一包装容器蓋部101の内部側面には、第一包装容器本体部103を封止するためのネジ受部110を有している。図1Bは第一包装容器本体部103を示している。当該第一包装容器本体部103の底面に培養容器104を保持することになる。また、第一包装容器本体部103の外周側面には、第一包装容器蓋部101のネジ受部110と接合可能なネジ部111を有している。当該ネジ部111とネジ受部110とが接合することで、第一包装容器を封止することが可能となる。また、本例においては、ネジ部111を設けることで封止する例を示すが、これに限らず、フック材等を用いて両者を封止しても良いし、第一包装容器本体部側面または蓋部内部側面にゴム等の弾性部材を装着して、蓋部材を封止する構成としても良いことは云うまでもない。図1Cは生体試料が導入、収納される培養容器104を示している。培養容器104の中には、培地105が入っている。培地の中には生体試料120が入っている。一般的に、培養容器を用いて生体試料を培養する場合は、蓋も併せて使用する。蓋には、培養容器の外側から酸素等の気体が内部へ入り込めるよう、隙間が設けられている。そのため、この培養容器を輸送に用いると、傾いた時に培地が漏出する。これは生物学的汚染の原因となる。そのため、本方法では、培養容器の蓋を第一包装容器蓋部101に変える。すなわち、第一包装容器本体部103と、第一包装容器本体部103の底面において保持される培養容器104とを第一包装容器蓋部101で封止することで、輸送中の培地の漏出を防止する。第一包装容器本体部103と培養容器104とを封止するためには、培養容器104の側壁と第一包装容器本体部103の側壁部の高さを同一とすることが望ましい。これにより第一包装容器蓋部101のネジ受部110の締め付け力のみで両者を封止することが可能となる。また、前述したように蓋部101に弾性部材102を装着しておくことでさらに漏出の可能性を低減することが可能となる。またさらに、培養容器104の側壁の高さを同一としなくとも僅かに高い場合には、弾性部材102の弾性力により高さの違いを吸収することが可能となるとともに、第一包装容器本体103の底面とのさらに強固な圧接が可能となる。たとえ培養容器104の側壁が第一包装容器本体部103よりも低くとも、蓋部101の当該側壁に対応する位置に凸部を設け、弾性部材102の形状をそれに合わせた形状にしておけば、同様の効果を得られることは云うまでもない。ここで、上記では培養容器104の蓋と、第一包装容器本体部103の蓋を共通の蓋部材101とすることを示したが、これに限るものではなく、培養容器104を密封可能な蓋部材を別途設けることも可能であることは云うまでもない。つまり、培養容器を封止する培養容器蓋部を設け、第一包装容器本体部と第一包装容器蓋部から成る第一包装容器に収納する。この場合、第一包装容器蓋部101と本体部103とにおけるネジ部110、111の締め付け力により、培養容器104が第一包装容器本体部の底面部において保持される構造であれば良い。この場合、後述する第二包装容器は無くても良い。輸送先の清浄度の段階に応じて多重包装とすることも可能である。図1Dは、第一包装容器本体部103へ、培養容器本体部104を収容した状態を示している。図1Eは、図1Dの状態からさらに、第一包装容器蓋部101を、第一包装容器本体部103と一体化した状態を示している。これらは、ネジ構造により一体化が可能である。この時、第一包装容器蓋部101の締め付け力により培養容器104へ、第一弾性部材102が圧着されている。これにより、培養容器104を傾けても、内部の培地105は外部に漏出しない。また、培養容器104と第一包装容器本体部103も圧着されている。よって、両者の間に空気層は略存在しないことになる。図2Aは第二包装容器蓋部201を示している。第二包装容器蓋部201は、培地等の漏出を強固に防ぐためにシリコーン、ゴム等の第二弾性部材202を有する構成としても良い。第二弾性部材202は、γ線照射等による滅菌処理が可能で、有害物質等を発することのない、医療用途の品質のものが好ましい。当該第二弾性部材202は容器素材よりも軟質のものが好ましく、後述する第一包装容器本体103の底部外表面を第二包装容器本体部203の底面に圧着させる際に、適度な押圧力で第二包装容器本体部203底面部に押しつけることが可能となる。ここで第二弾性部材202は、滅菌処理の一元化等が可能となる様に、第一弾性部材102と同一の素材を選択することが望ましい。また、第二包装容器蓋部201の内部側面には第二包装容器本体部203を封止するためのネジ受部210を有している。図2Bは第二包装容器本体部203を示している。当該第二包装容器本体部203の底面に第一包装容器本体部103を保持することになる。具体的には第一包装容器本体部103の底部外表面が第二包装容器本体部203の底面において保持されることになる。また、第二包装容器本体部203の外周側面には、第二包装容器蓋部201のネジ受部210と接合可能なネジ部211を有している。当該ネジ部211とネジ受部210とが接合することで、第二包装容器を封止することが可能となる。また、本例においては、ネジ部211を設けることで封止する例を示すが、これに限らず、フック材等を用いて両者を封止しても良いし、第二包装容器本体部側面または蓋部内部側面にゴム等の弾性部材を装着して、蓋部材とを封止する構成としても良いことは云うまでもない。図2Cは、第二包装容器本体部203へ、図1Eで示した第一包装容器100で包装した培養容器104を、収容した状態を示している。ここで、第二包装容器本体部203の側壁に備えられるネジ部211は、第一包装容器100の持つ全幅よりも外側に設置されている。これにより、第二包装容器蓋部201のネジ受部210が接合することで、その締め付け力により第一包装容器100を押しつけることが可能となり、その結果、第二包装容器本体部203底部に対して第一包装容器本体部103が圧接され保持されることとなる。図2Dは、図2Cの状態からさらに、第二包装容器蓋部201で一体化した状態を示している。第二包装容器蓋部201および本体部203は、ネジ構造により一体化が可能である。この時、第二包装容器蓋部201と第一包装容器蓋部101は圧着されている。第二包装容器本体部203と第一包装容器本体部103も同様に圧着されている。これにより、それぞれの境界において、空気層は略存在しない。尚、培養容器104には、底部外表面に高さ0.1~数mm程度のリブ凸部が設けられている場合がある。これは、培養容器を顕微鏡のステージ等に置いた時に、培養容器の底部の全面が接着しないようにするためのものである。リブを有する培養容器については、第一包装容器本体において、リブが入るための窪み凹部を設けても良い。これにより、培養容器の底面と、第一包装容器本体はより密接に接することが可能となる。また、包装容器により包装した状態で輸送する際、窪みの中にリブが入っていることで、横方向へ培養容器が移動しないという効果も期待できる。図3は、図1及び図2に示す実施例の変形例を示すものである。第一包装容器本体部103の内部側面及び培養容器104の外表面にネジ構造330を、また、第二包装容器本体部203の内部側面及び第一包装容器本体部103の外表面にネジ構造340を夫々設けたものである。当該構造によれば、ネジ構造により夫々の保持位置が一意に決まるという効果がある。さらに、ネジ構造による締め付け力により、保持すべき底面と、底部外表面との圧接が容易となる。ここで、図11を用いて、包装容器により培養容器を包装した状態で、培養容器内の生体試料を観察する時の光路の概略について説明する。図11は、包装容器に収容された培養容器の内部にある、生体試料を顕微鏡により観察する時の状態を示している。顕微鏡は、医療機関や細胞処理施設等で一般に使われる倒立式位相差顕微鏡の例である。包装容器により包装された培養容器1101の内部には、培地1102と生体試料1103が入っている。また、包装状態の培養容器は、倒立式位相差顕微鏡のステージ1104の上に置かれている。対物レンズ1105がステージ1104の下部に設置され、視野を明るくするための照明1106がステージの上部に設置されている。生体試料を観察する際の光路1107を例として示している。観察手法は従来の観察方法と同様のため、説明を省略する。ここで、生体試料を上述の構造において観察するための条件について、以下図12を用いて説明する。図12Aは、培養容器1208、包装容器の内容器1209、外容器1210に対し、拡大した模式図であり、本発明において、包装容器等の圧着が十分になされ、各面が十分に平滑である場合の光路1211を示している。この場合、光路は各容器間の接着面で乱されることがないため、結果として、鮮明な顕微鏡画像を得ることができる。一方、図12Bは、本発明において、包装容器および培養容器の接続、保持が不十分で、各面が十分に平滑ではなく、結果として光路に対し影響を及ぼしている場合の例を示している。培養容器1212、包装容器の内容器1213、外容器1214の境界面において、接続の不足と、各面の非平滑性を原因として生じる空隙1215により、光路1216に対し、屈折や散乱および乱反射1217が生じることになる。これにより、鮮明な顕微鏡画像を得ることはできなくなる。上記検討によれば、各層間において、出来る限り空気層等の屈折率の異なる領域を排することが必要であり、好ましくは各層表面の粗さを滑らかにし、さらに各容器を圧着することが必要であると分かる。またさらに、一般的な倒立式位相差顕微鏡を用いる場合、細胞の観察には100倍程度が必要である。この場合、第一包装容器本体部と培養容器の間における圧着と合わせ、かつ、全体の厚さの合計値を3mm以下にすることが望ましい。40倍程度のより低倍率で観察する場合は、全体の厚さの合計値はそれよりも大きくなっても良い。これにより、倒立式位相差顕微鏡により外部から観察する際、生体試料へ焦点を合せることが可能となる。すなわち、鮮明な顕微鏡画像を取得することが可能となる。上記条件は一例であるが、光学的手段により非侵襲的評価を鮮明な画像により行う場合には上記要件とすることが望ましい。次に、本実施例の包装容器を維持した状態での、上記の光学的観察の他の評価例を、図4を用いて以下説明する。図4は、培養容器を、第一包装容器および第二包装容器に収容したまま、生体試料403の厚さを計測する方法を示している。図4Aは培養容器402と第一包装容器本体部401の断面拡大図である。図4Aのように、第一包装容器本体部401と培養容器402の間に、窪み404を設置する。すなわち、第一包装容器本体部401の底面に凹部を設けるものである。尚、培養容器402の培養表面側には、細胞403が層状の厚みを持った状態で接着している場合を示している。図4Bは、窪み404の鉛直方向および水平方向の断面図を示したものである。第一包装容器本体部の表面405に、柱状の窪みを設置する。第一包装容器本体部の表面405と、窪みの底面406は、窪みの側面部407を介している。側面部の高さは50~500μm程度とし、その値は正確に把握できるものとする。第一包装容器本体部の表面405には、5μm程度の深さで任意の文字408を刻印する。本図ではAという文字の例を示した。窪みの底面406には、文字408と異なる種類の文字409を刻印する。本図ではBという文字の例を示した。図4Cは、第一包装容器本体部401と培養容器402の間に、目盛り410を設置した図である。顕微鏡視野内で、生体試料の縦および横の大きさを把握する目安として用いる。包装容器に培養容器を収容した状態で、倒立式位相差顕微鏡の顕微鏡視野において、文字408に対し焦点を合わせ、その時の、倒立式位相差顕微鏡の焦点を作動させるダイヤルの角度あるいは位置を記録する。続いて、文字409に対し焦点を合わせ、その時のダイヤルの角度あるいは位置を記録する。そして、前述の2文字に焦点を合わせた時のダイヤルの角度あるいは位置の差分値を算出する。それを用いて、ダイヤルの差分値と、窪みの深さの値より、回転させるダイヤルの角度あるいは位置の変化の単位量が、培養容器の鉛直方向の高さの変異において相当する量を算出する。続いて文字408に対し焦点を合わせ、その時のダイヤルの角度あるいは位置を記録する。次に、培養容器の培養表面上にある生体試料の上端へ焦点を合わせ、ダイヤルの角度あるいは位置を記録する。それぞれの焦点を合わせた時のダイヤルの角度あるいは位置の差分値を算出する。事前に求めた、焦点を合わせるために回転させるダイヤルの角度あるいは位置の変化の単位量が、培養容器の鉛直方向の高さの変異において相当する量を用いて、培養容器の培養表面と、再生組織等の生体試料の上端との距離を算出する。そして、そこから培養容器の厚さの値を引く。得られた値が、生体試料の厚さとなる。同等の窪みと文字の刻印を、第一包装容器本体部の任意の位置に設置し、それぞれの場所で生体試料の厚さを求め、その平均値および分散を算出することにより、再生組織等の生体試料の厚さのムラの評価も可能である。以上より、細胞の清浄性を維持したまま、非侵襲的に生体試料の厚さを評価することが可能となる。包装された状態で、外部から顕微鏡による光学的手段により細胞を観察する方法は、細胞に直接触れてはいないため、非侵襲的な評価方法である。細胞の状態に影響は及ぼさない。尚、上述の例において、文字をマークとして使用する例を示したが、文字に限らず、記号、図記号、等マークとなり得るものであれば、限定されるものではないことは云うまでもない。また、上記においては倒立式位相差顕微鏡を例に説明したが、これに限るものではなく、例えば反射型の光学顕微鏡を用いることも可能である。この場合、ステージ上に容器を載置し、容器の裏面側下方から光源により光を照射する。ここで反射される光を容器裏面側に配置され好ましくは光源と対向配置された撮像装置で撮像することになる。このとき、培養容器に蓋が有る場合は培養容器の蓋、包装容器と共用する場合には包装容器の蓋部の光が侵入する側の面を、ステンレス、鏡等の反射部材で構成すると、明るさが担保され、画像が鮮明となる。図5は、第一包装容器の一部に、培地を満たすための栓501を有した構成図を示している。栓501を使い、培養容器の中に培地を満たす。栓には、弾性のある医療用ゴム等を用いるのが好ましい。培地を満たす作業では、シリンジを2つ用意する。片方のシリンジには、十分量の培地を入れる。これを、片方の栓に刺し入れる。その状態で、残りの栓に、空のシリンジを刺し入れる。培地の入ったシリンジより培地を注入し、同時に、空のシリンジより余った空気を回収する。培地が培養容器の内部に満たされた後、両方のシリンジを抜く。包装容器を開封して生体試料を取り出す時は、培地が満たされた状態のままでは培地がこぼれてしまうため、逆の手順を実施して培養容器内に空気を注入してから開封する。このような構造を採用することで、培地を満たすことが必要な生体試料についても容易にハンドリングが可能となる。図6は、第一および第二包装容器蓋部の一部を、気体透過性膜601、602にしたものである。これにより、輸送中も外気から酸素等の気体を内部に取り込むことが可能となる。生体試料は様々な細胞により構成されるが、例えば心筋細胞は酸素要求性が大きい。そのような細胞を輸送する場合には、気体透過膜より、包装容器の外部から酸素を供給することで、輸送後の生体試料の状態は良くなる。また、外部より二酸化炭素を供給し、培地のpHを制御することも可能である。このように気体透過膜を蓋部材に採用することで、酸素要求性の高い細胞等の生体試料についても清浄性を維持しつつ、非侵襲的に観察が可能な包装容器を提供することが可能となる。図7は、他の種類の培養容器を包装した場合の例である。図7Aはインサート型培養容器701に対する例である。インサート型培養容器を用いて細胞を培養する場合、一般的には、6ウェルプレート等の中にインサート型培養容器を入れて二層培養を行う。インサート型培養容器の輸送では、これを収容するインサート型培養容器用容器702を用意し、その中に入れた状態で、第一および第二包装容器内へ収容する。図7Bは6ウェルプレート703に対して包装した例である。円柱状の培養容器やインサート型培養容器用容器は、水平方向の断面が円形であるため、第一および第二包装容器の蓋を回転させることにより一体化が可能である。一方、6ウェルプレートは直方体形状である。よって、本図では、ネジ704、705を用いて、第一および第二包装容器の4隅を固定することで、一体化させるものを示している。他の方法として、勘合、ピン止め、バネ材等により、複数箇所を固定することにより保持できることは言うまでもない。図8は、前述のように包装した培養容器に対し、蓄熱材を用いて内部温度を一定に維持することのできる細胞輸送容器を用いて、輸送を実施する場合の構成の例を示したものである。細胞輸送容器は、内部の構成部品を収容する容器本体801と、容器蓋802の内側に、断熱材803を配置する。その内側に、蓄熱材が封入された蓄熱材ボックス804を配置する。蓄熱材の種類は、一定の融点を有する純物質、あるいは、熱容量が大きく融点の温度変化が小さい例えば±1°C以下物質を用いるものとする。例として炭化水素が挙げられる。例えばC20H42を使用する場合、融点は364°Cである。Cの数の異なる炭水素は、異なる融点を有する。よって、適切に炭化水素の種類を決定することにより、細胞輸送容器が一定に維持する温度の値を変えることが可能である。蓄熱材ボックス804に挟まれた場所に、培養容器収容部805の中に配置された培養容器806と、輸送中の温度等を評価するためのモニタリング装置807を配置する。これにより、輸送中の温度を、輸送後に確認することが可能となる。ここで図9、10を用いて、本実施例に示す包装容器をCPC等の細胞処理施設から医療機関等に運ぶ様子を模式的に示す。図9は、細胞処理施設から培養容器を運び出す時の過程を、図10は、輸送後、医療機関へ培養容器を運び込む時の過程について示している。図9に示すように、細胞は、CPC等の細胞処理施設内の培養エリアで培養する。この部屋の清浄度は、グレードAに次いで高い、グレードBと一般に設定される。培養時の培養容器は恒温槽に入っており、必要に応じて取り出し、安全キャビネット内にて培地交換等の作業を実施する。安全キャビネット内の清浄度は、グレードAと一般に設定される。培養が終わり、医療機関へ出荷することになったサンプルは、安全キャビネット内で包装容器により二重に包装を行う。包装容器は事前に滅菌処理を施し無菌状態である。これにより、包装し終えた時点で、培養容器内および包装容器の内外は、グレードAと同等の清浄性を有する。この状態で、細胞処理施設の外へ、包装した培養容器を運び出す。この時、必要に応じ、温度を一定に維持する輸送容器へ収容する。培養エリアから細胞処理施設の外へ運び出すにつれ、輸送環境中の清浄性は低下する。よって、最終的に、一番外側に位置する包装容器の外部には菌等の生物や粒子が付着する。一方、一番外側に位置する包装容器の内部、培養容器等は、未開封状態であるため、グレードAの清浄性を維持する。図10は、医療機関に運び込む時の過程を示したものである。医療機関に到着後、まず、生体試料の状態を評価する。当該評価の結果を受けて、治療に用いることが可能であることを確認する。この時、治療に用いる予定のサンプルについては、非侵襲的な評価方法でなければならない。侵襲的な評価方法では、生体試料の質が変化するからである。また、全数検査を実施できることが望ましい。培養した生体試料は、同じ細胞ソースを用い、同じ製造過程を経ているため、培養後の質も同じと考えられるが、細胞はわずかな環境の変化により容易に質が変わりうるからである。よって、本実施例では、培養容器を包装した状態のまま、上述した非侵襲的な評価方法である顕微鏡観察を実施する。そして、細胞の形状、接着状態、生体試料の厚さの評価を行う。必要に応じ、包装容器に組み込んだ窪みや目盛りにより、定量評価を行う。従来、研究機関等で行われていた細胞の検査等では、伸縮性シール等により密封された培養容器に対し、顕微鏡観察を行うのみであった。定量的な評価を行うには、生体試料に対し、侵襲的な評価例えば組織学的評価、細胞生存率評価を実施する必要があった。これを実施すると、生体試料を治療に用いることができなくなる。一方、非侵襲的な評価方法である顕微鏡観察のみを実施する場合、細胞の形状、接着状態を観察することは可能だが、それは定性的な評価であった。また、生体試料の良否の判定は、作業者の知識と経験に基づいていた。よって、作業者間で判定の基準を一定にすることは困難であった。それに対し、本発明により、より正確な定量的な評価が可能となる。上記の評価により、治療に用いることができると判断されたなら、治療の準備を開始する。治療を行う患者への準備等を実施する。その後、培養容器を、治療を実施する手術室へ運ぶ。手術室内は清浄であり、清潔野と不潔野が設けられている。手術室に運び込んだ培養容器は、まず、外側をエタノール等により消毒する。そして、不潔野で、包装容器の一番外側に位置する外容器を開封する。この時、外容器の外部が、清浄な内容器の外側に触れないように注意を払う。そして、内容器のみを、取り出す。続いて内容器を開封する。内容器の蓋を取り外し、清潔野の器具のみを取り扱う担当である作業者が、培養容器のみを取り出す。この時、内容器の外部が、清浄な培養容器の外側に触れないように注意を払う。最後に、同じ作業者が、清潔野にて培養容器から生体試料を取り出す。それを治療に用いる。次に、以上の構成を有する包装容器を用い、細胞を輸送する時の一連の手順について説明する。<ステップS1:事前準備>細胞を輸送するために必要な事前準備を行う。包装容器は、事前にオートクレーブバッグ等により包装し、その状態で滅菌処理を施し無菌化する。滅菌処理の方法は、オートクレーブ処理、エチレンオキシダイドガス処理、γ線照射等とし、滅菌処理を施すことにより、包装容器の性質を変化させない方法を選択する。例えば素材がポリスチレンであれば、γ線照射処理を採用する。蓄熱材を封入した蓄熱材ボックスは、蓄熱材が炭化水素C20H42である場合、蓄熱材ボックスの素材を金属または耐熱性のポリカーボネイトとし、炭化水素C20H42を完全に密封した状態で封入する。炭化水素C20H42の融点は344°Cであるため、オートクレーブ処理120°Cを施しても気化せず、蓄熱材ボックスの温度維持性能に関する影響はない。滅菌後は、蓄熱材に熱を蓄えるため、包装した状態で恒温槽の中に入れ、温度が安定するまで静置する。例として、融点が364°Cである炭化水素C20H42の場合、輸送する外界の温度の大半が364°C以下である場合、恒温槽の温度は37°Cとする。輸送中、外界の温度の方がC20H42の融点よりも温度が低いため、熱は細胞輸送容器の中から外へ出ていくからである。逆に、輸送する外界の温度の大半が364°C以上である場合、恒温槽の温度は36°Cとする。輸送中、外界の温度の方がC20H42の融点よりも温度が高いため、熱は細胞輸送容器の中へ外から入り込むためである。各種滅菌に対する耐性を有していないモニタリング機器等については、エタノール消毒を施すこととする。<ステップS2:細胞処理施設内への運び込み>滅菌を施した細胞輸送容器と包装容器を、細胞処理施設内の培養エリアへ運び込む。細胞処理施設内の部屋間の移動に際しては、部屋の清浄性の維持と交差汚染防止のため、パスボックスを通過させる必要がある。パスボックスを通過させる時には、それぞれの構成部品に対し、包装の外側からエタノールを噴霧して消毒し、パスボックスの中に入れ、移動する部屋の側の扉から取り出す。細胞培養エリアに到着後、包装容器以外の機材に関しては、包装を開け、包装の外側に触れないよう無菌的に取り出す。蓄熱材ボックスは、室温下に晒したままでは温度が変化するため、可能ならば同じ部屋に恒温槽を用意しておき、使用するまで恒温槽の中に入れ、温度変化を防ぐことが望ましい。包装容器は、包装の周囲をエタノール噴霧により消毒し、安全キャビネット内へ入れる。その後、包装の外側に触れないように包装容器を無菌的に取り出す。モニタリング装置の運び込みについては、事前に外部へエタノール消毒を施すとする。細胞を処理する部屋への機材等の持ち込みは、滅菌処理を施し無菌化することが望ましいが、機械装置に対し滅菌処理を施せないため、一般にエタノール処理のみを施す。<ステップS3:培養容器の収容>恒温槽の中で培養していた培養容器を、安全キャビネット内へ移動する。安全キャビネット内では、必要に応じ、恒温槽の温度と同じ値に設定したヒートブロック等の設備をあらかじめ準備しておく。これを用い、細胞輸送容器への培養容器の収容が終了するまでの間、培養容器の温度を一定に維持する。安全キャビネット内に移動した培養容器に対し、蓋を取り外し、培養容器の中へ、溢れない程度に培地を満たす。そして第一包装容器で包装する。この時、培地がこぼれないように注意する。また、この操作は、内部が汚染される可能性を低くするため、手早く行う。作業後や待ち時間等では、培養容器の温度の低下を極力避けるため、ヒートブロック等を利用する。続いて、同様の手順により、第二包装容器により、手早く収容を行う。栓を有する第一包装容器蓋部を用いて培地を完全に満たす場合は、シリンジを2つ用意する。片方のシリンジには、十分量の培地を入れる。これを、片方の栓に刺し入れる。その状態で、残りの栓に、空のシリンジを刺し入れる。培地の入ったシリンジより培地を注入し、同時に、余った空気を空のシリンジより回収する。培地が培養容器の内部に満たされた後、両方のシリンジを抜く。<ステップS4:細胞輸送容器への収容>事前に用意した培養容器収容部へ、ステップS3で包装した培養容器を収容する。次に、細胞輸送容器の内部へ、蓄熱材ボックス、培養容器を収容した培養容器収容部、モニタリング装置を収容する。モニタリング装置は、収容する前に電源を入れて測定を開始し、輸送中の全行程にわたり、温度を測定する。<ステップS5:細胞処理施設外への運び出し>細胞輸送容器を、細胞培養を実施する部屋から、細胞処理施設外へ運び出す。部屋間の移動に際しては、交差汚染防止のため、エタノール噴霧により消毒してから、パスボックスを通過させる。<ステップS6:細胞輸送容器の輸送>輸送先の医療機関の場所に応じ、移動手段を選択して細胞輸送容器を輸送する。輸送手段は主に、車両、鉄道、航空機、手運びである。車両、鉄道、航空機で運んでいる最中は、細胞輸送容器が横転しないよう、必要に応じて細胞輸送容器を床面に固定することが望ましい。また、手運びの場合は、細胞輸送容器が極力揺れないよう、輸送作業者が注意を払う。培養容器内の培地は、培養容器内に満たした状態となっている。輸送中に培養容器が傾いた場合に生じる細胞への影響は、細胞が気相の中に入り乾くこと、細胞が気相と液相の間に生じた表面張力による作用を受けること、液相の中に対流が生じて細胞にシアストレスの生じることが想定される。これらは、培養容器内の気相部分が小さいほど、影響も小さくなる。本発明による輸送方法では、培地を培養容器内に極力満たした状態となっているため、輸送中の気相の影響は、あまり大きくないと考えられる。また、輸送中の傾きにより、生体試料にかかる重力の方向は、細胞処理施設内での培養時と比べ、変わる。この影響については、細胞輸送容器が直立している限りは、細胞処理施設内での培養時と同じ重力の方向である。また、細胞輸送容器が直立していない状態を長時間とることはない。よって、重力による影響は軽微と考えられる。<ステップS7:輸送先における受入検査>輸送先である医療機関等への到着後は、まず、輸送中の生体試料の周辺温度の確認を行う。モニタリング装置のデータをPC等へ移動させ、評価を行う。続いて、輸送した生体試料の状態を確認する。検査の方法は様々にあるが、治療に用いるサンプルに対しては、非侵襲的な検査である必要がある。すなわち、生体試料に対し、直接的、もしくは培地等を介して、接触することのない方法である。本発明の包装容器を用いる場合は、非侵襲的な検査方法として、倒立式位相差顕微鏡による細胞形態、細胞接着等の評価、生体試料の厚さの計測を行う。これは、全サンプルに対して評価を実施することが可能である。また、検査を行う時は、細胞輸送容器から培養容器を一旦取り出し、顕微鏡にて素早く評価を実施し、速やかに細胞輸送容器へ再び収容する。これにより、検査後も、培養容器は同じ温度下に保管されることになる。尚、治療に用いないサンプルについては、侵襲的な検査により、より詳細に調べてもよい。その場合、生体試料に対して各種処置を行い、細胞数、細胞生存率、組織構造、特定タンパク質の発現状況等を調べることが可能である。評価の結果、輸送したサンプルが治療に適することが確認できたならば、治療の準備を開始する。治療の準備に1日程度を要することはありうる。加えて、全ての医療機関に、恒温槽等の設備があるとは限らない。その場合は、医療機関に到着後も、治療を開始する時まで、細胞輸送容器の中に培養容器を収容したままにし、温度と清浄性を維持する。<ステップS8:治療>治療の準備が整ったら、治療を行う部屋以下手術室とするへ細胞輸送容器を移動させる。手術室へ着いたら、包装容器に包装された培養容器を取り出す。必要に応じ、この状態で、手術室に設置された恒温槽へ培養容器を入れ、所定の温度下に維持する。例えば、培養容器が温度応答性培養表面を有している場合、治療を行う直前に、低温処理例として20°C下に30分晒すを施し、温度応答性培養表面に接着していた生体試料を剥離させる。続いて、生体試料を培養容器より取り出す。包装容器の外側は、日常空間を通過しているため、菌等の生物や粒子が付着している可能性が高い。よって、包装容器の内部が清浄性を維持するよう、段階的に開封する。まず、手術室における不潔野の作業者が、エタノールあるいはポビドンヨード等の消毒薬により、包装容器の外側を清拭する。そして、包装容器の一番外側である第二包装容器を持ち、その蓋を取り去る。続いて、別の作業者が、内側の第一包装容器を取り出す。この時、第一包装容器と、第二包装容器の外側が、接しないようにする。この状態で、第一包装容器蓋部が栓を有している場合は、満たされた培地の一部を吸引する。培地が満たされた状態のまま開封すると、培地がこぼれてしまう可能性が高いからである。培地を満たした時のS3と逆の手順を実施する。続いて、第一包装容器を持ち、その蓋を取り去る。そして清潔野の作業者が、無菌的に、培養容器を取り出す。この時、培養容器と、第一包装容器の外側が、接しないように無菌的に取り出す。最後に、培養容器から再生組織等を含む生体試料をピンセット等で取り出す。これを治療に用いる。以上のように、包装を段階的に開封することで、培養容器内の清浄性を確実に維持することが可能となる。以上の実施例においては、主に培養容器を二重包装する例について示したが、これに限ることは無く、清浄レベルが細分化された施設等への運び込みに対応するために、さらなる多重包装形態を採用することも可能である。また、培養容器を密封可能な蓋を設けることで、少なくとも第一包装容器と培養容器とが底部で保持され非侵襲的に観察可能な構造であれば、少なくとも二段階の清浄レベルを有する空間において対処が可能となる。以上の実施例においては生体試料を主に記載したが、同様に清浄性が求められる、半導体チップ等の精密部品が導入された試料容器にも本発明の包装容器を用いることが可能であることは、言うまでもない。