"γGluAla、γGluGly、γGluMet、γGluThr、γGluVal、γGluOrn、γGluSer、γGluTau、γGluLeu、γGluIle、γGlutLeu、γGluMet、γGluγGluVal、γGluValNH2、γGluValol、AspGly、CysGly、CysMet、GlyCys、LeuAsp、DCysおよびγGluValYから選択される1種または2種以上を有効成分として含む、カルシウム受容体活性化作用を有するコク味付与剤。コク味付与剤が、塩味、うま味、甘味または酸味のいずれかを増強するものである、請求項1に記載のコク味付与剤。請求項1または2に記載のコク味付与剤から選択される1種または2種以上、および、カルシウム受容体刺激活性を有する他の化合物から選択される1種または2種以上を含有する食品組成物。前記カルシウム受容体刺激活性を有する他の化合物が、カルシウム、プロタミン、ポリアルギニン、スペルミン、ポリリジン、グルタチオンおよびシナカルセットである、請求項3に記載の食品組成物。請求項1または2に記載のコク味付与剤から選択される1種または2種以上を、飲食品に対して1質量ppb~99.9質量含有させるように添加することを特徴とする、コク味が付与された飲食品の製造方法。請求項1または2に記載のコク味付与剤から選択される1種または2種以上を、飲食品に対して0.0001~0.1質量含有させるように添加することを特徴とする、コク味が付与された飲食品の製造方法。請求項1または2に記載のコク味付与剤から選択される1種または2種以上を、1質量ppb~99.9質量含有してなる調味料を、飲食品に対して0.01~10質量含有させるように添加することを特徴とする、コク味が付与された飲食品の製造方法。請求項5~7のいずれか一項に記載の方法により得られうる、コク味が付与された飲食品。下記式を有する化合物。γGluValY本発明は、コク味付与物質の簡便かつ高感度なスクリ-ニング法、高性能で、安全かつ安価なコク味付与剤、コク味が付与された食品、調味料、飲料等の飲食品の製造方法及びコク味が付与された飲食品を提供することを課題とする。本発明者は、カルシウム受容体の活性化剤を探索した結果、グルタチオンを含む低分子ペプチドにカルシウム受容体を活性化する働きがあることを見出した。また、グルタチオンはコク味付与物質として知られていることから、カルシウム受容体の活性化剤である低分子ペプチドがコク味を呈するか否かを評価した結果、該低分子ペプチドがコク味を呈することを見出し、これらの知見に基づいて本発明を完成させた。すなわち、本発明は以下のとおりである。1カルシウム受容体活性を指標とすることを特徴とする、コク味付与物質のスクリ-ニング方法。2コク味付与物質が、塩味、うま味、甘味または酸味の少なくとも一種を増強するものである、1に記載のスクリーニング方法。3カルシウム受容体と被検物質とを反応させ、カルシウム受容体活性を検出する第1工程と、第1工程でカルシウム受容体刺激活性が検出された被検物質のコク味付与効果を測定する第2工程とを含有する、1又は2に記載のスクリーニング方法。41~3のいずれかに記載の方法により得られうるコク味付与物質を有効成分として含む、コク味付与剤。5コク味付与物質が、γGluXGlyXはCysを除くアミノ酸又はアミノ酸誘導体を表す、γGluValY、γGluAla、γGluGly、γGluCys、γGluMet、γGluThr、γGluVal、γGluOrn、AspGly、CysGly、CysMet、GluCys、GlyCys、LeuAsp、DCys、γGluMet、γGluγGluVal、γGluValNH2、γGluValol、γGluSer、γGluTau、γGluCysSMeO、γGluLeu、γGluIle、γGlutLeuおよびγGluCysSMe、から選択される1種または2種以上である、4に記載のコク味付与剤。6前記XがCys、Cys、Gly、Cys、AbuまたはSerであり、前記YがGly、Val、Glu、Lys、Phe、Ser、Pro、Arg、Asp、Met、Thr、His、Orn、Asn、CysまたはGlnである、5に記載のコク味付与剤。7コク味付与剤が、塩味、うま味、甘味または酸味のいずれかを増強するものである、4~6のいずれかに記載のコク味付与剤。84~7のいずれかに記載のコク味付与剤から選択される、1種または2種以上、および、カルシウム受容体刺激活性を有する他の化合物から選択される1種または2種以上を含有する食品組成物。9カルシウム受容体刺激活性を有する他の化合物がカルシウム、プロタミン、ポリアルギニン、スペルミン、ポリリジン、グルタチオンおよびシナカルセットである、8に記載の食品組成物。104~7のいずれかに記載のコク味付与剤から選択される、1種または2種以上を、飲食品に対して1質量ppb~99.9質量含有させるように添加することを特徴とする、コク味が付与された飲食品の製造方法。114~7のいずれかに記載のコク味付与剤から選択される1種または2種以上を、1質量ppb~99.9質量含有してなる調味料を、飲食品に対して0.01~10質量含有させるように添加することを特徴とする、コク味が付与された飲食品の製造方法。1210又は11に記載の方法により得られうる、コク味が付与された飲食品。13γGluValGlyを1質量ppb~99.9質量と、カルシウム、プロタミン、ポリアルギニン、スペルミン、ポリリジン、グルタチオンおよびシナカルセットから選ばれる1種または2種類以上を1質量ppb~99.9質量とを含んでなる組成物。14グルタチオン、プロタミン、ポリリジン、GABA及びそれらの塩から選択される1種または2種以上を1質量ppb~999質量と、カルシウムまたはその塩を1質量ppb~99.9質量とを含んでなる組成物。15下記式を有する化合物。γGluXGlyXはAsnGlnHisLysOrnまたはArgを表す、又はγGluValY161~3のいずれかに記載の方法により得られうるコク味付与物質のコク味付与剤としての使用。171~3のいずれかに記載の方法により得られうるコク味付与物質を飲食品に添加することを含む、飲食品にコク味を付与する方法。本発明により、コク味付与物質の簡便かつ高感度なスクリーニング法、当該スクリーニング法により得られうる、高性能で、安全かつ安価なコク味付与剤、コク味が付与された食品、調味料、飲料等の飲食品の製造方法及びコク味が付与された飲食品が提供される。以下、本発明を詳細に説明する。本明細書中においてカルシウム受容体とは、カルシウムセンシング受容体もしくはCalciumSensingReceptorCaSRと呼ばれる、7回膜貫通型受容体のクラスCに属するものを指す。本明細書中においてカルシウム受容体活性とは、上記カルシウム受容体に結合し、グアニンヌクレオチド結合タンパク質を活性化して、シグナルを伝達することを意味する。また、本明細書中においてカルシウム受容体活性化剤とは、上記カルシウム受容体に作用し、カルシウム受容体を活性化し、カルシウム受容体を発現している細胞の機能を調節するものをいう。本明細書中において、コク味とは、甘味、塩味、酸味、苦味、うま味で表される5基本味では表せない味を意味し、基本味だけではなく、厚みひろがり持続性まとまりなど基本味の周辺の味をも増強した味をいう。また、コク味付与剤又はコク味付与物質とは、甘味、塩味、酸味、苦味、うま味で表される5基本味の増強と、それに伴う厚みひろがり持続性まとまりなど基本味の周辺の味を付与することができる剤又は物質をいう。従って、本発明のコク味付与剤は、甘味増強剤、塩味増強剤、酸味増強剤、苦味増強剤、うま味増強剤としても使用することができる。なお、コク味の強さとしての、先中味とは喫食後0から4秒までに感じる呈味であり、後味とは喫食後5秒以降に感じる呈味のことを示す。本明細書中において各アミノ酸及び各ペプチドを構成するアミノ酸は、特に断わらない限りいずれもL-体である。<1>コク味付与物質のスクリ-ニング方法本発明のコク味付与物質のスクリ-ニング方法以下、本発明のスクリ-ニング方法ともいうは、カルシウム受容体活性を指標とすることを特徴とする。具体的には、本発明のスクリ-ニング方法は、カルシウム受容体と被検物質とを反応させ、カルシウム受容体活性を検出する第1工程と、第1工程でカルシウム受容体刺激活性が検出された被検物質のコク味付与効果を測定する第2工程とを含有する。以下に本発明のスクリ-ニング方法を例示するが、これらのステップに限定されるものではない。1カルシウム受容体活性を測定するためのカルシウム受容体活性測定系に被検物質を添加して、カルシウム受容体活性を測定する。2被験物質を添加したときのカルシウム受容体活性と、被験物質を添加しなかったときのカルシウム受容体活性を比較する。3被験物質を添加したときに高いカルシウム受容体刺激活性を示す被験物質を選択する。4選択された被験物質のコク味付与効果を測定し、コク味付与効果を有する被験物質を選択する。カルシウム受容体活性の測定は、例えば、カルシウム受容体を発現する細胞を用いた測定系を用いて行われる。上記細胞はカルシウム受容体を内在的に発現している細胞であっても、外来のカルシウム受容体遺伝子が導入された組み換え細胞であってもよい。上記カルシウム受容体活性測定系は上記カルシウム受容体を発現する細胞に、カルシウム受容体に特異的な細胞外リガンド活性化剤を加えたときに、活性化剤とカルシウム受容体との結合反応を検出することができるか、又は、活性化剤とカルシウム受容体との結合反応に応答して細胞内に検出可能なシグナルを伝達するものであれば、特に制限なく使用することができる。被検物質との反応によりカルシウム受容体活性が検出された場合、当該被検物質はカルシウム受容体刺激活性を有し、コク味付与物質であることが判別される。一方、上記コク味付与効果は、ヒトによる味覚試験などの方法によって確認することができる。また、スクリ-ニングに用いる被験物質としては、特に制限はなく、低分子化合物、糖類、ペプチド、タンパク質などを用いることができる。上記カルシウム受容体としては、GenBankAccessionNoNM000388で登録されているヒトカルシウム受容体遺伝子によってコ-ドされるヒトカルシウム受容体が好ましく例示できる。尚、カルシウム受容体は、上記配列の遺伝子によってコ-ドされるタンパク質に制限されず、カルシウム受容体機能を有するタンパク質をコ-ドする限りにおいて、上記配列と60以上、好ましくは80以上、より好ましくは90以上の相同性を有する遺伝子によってコ-ドされるタンパク質であってもよい。GPRC6A受容体や524受容体もまたカルシウム受容体のサブタイプとして知られており、本発明において利用可能である。なお、カルシウム受容体機能はこれらの遺伝子を細胞に発現させ、カルシウム添加時の電流の変化や細胞内カルシウムイオン濃度の変化を測定することによって調べることができる。上記カルシウム受容体は、その由来は特に制限されず、上記ヒトのカルシウム受容体のみならず、マウス、ラット、イヌなど含めた動物由来のカルシウム受容体が挙げられる。上述の如く、カルシウム受容体活性は、カルシウム受容体又はその断片を発現した生きた細胞、カルシウム受容体又はその断片を発現した細胞膜、カルシウム受容体又はその断片のタンパク質を含むインビトロの系などを利用して確認することが出来る。以下に生きた細胞を用いた一例を示すが、この一例に限定されるものではない。カルシウム受容体は、アフリカツメガエル卵母細胞やハムスタ-卵巣細胞やヒト胎児腎臓細胞等の培養細胞に発現させる。これは外来遺伝子を保持するプラスミドにカルシウム受容体遺伝子をクロ-ニングしたものを、プラスミドの状態もしくはそれを鋳型にしたcRNAを導入することで可能となる。反応の検出には電気生理学的手法や細胞内カルシウム上昇の蛍光指示試薬を用いることができる。カルシウム受容体の発現は、初めにカルシウムもしくは特異的活性化剤による応答で確認する。5mM程度の濃度のカルシウムに対して、細胞内電流が見られた卵母細胞もしくは蛍光指示試薬の蛍光が見られた培養細胞を使用する。カルシウムの濃度を変えて濃度依存性を測定する。次に、ペプチド等の被験物質を1μM~1mM程度に調製し、卵母細胞もしくは培養細胞に添加することで、上記ペプチド等の被験物質のカルシウム受容体活性を測定する。<2>コク味付与剤本発明のコク味付与剤は、本発明のスクリ-ニング方法により得られうるコク味付与物質を有効成分として含有する。例えば、本発明のコク味付与剤は、γGluXGlyXはCysを除くアミノ酸又はアミノ酸誘導体を表す、γGluValY、γGluAla、γGluGly、γGluCys、γGluMet、γGluThr、γGluVal、γGluOrn、AspGly、CysGly、CysMet、GluCys、GlyCys、LeuAsp、DCys、γGluMet、γGluγGluVal、γGluValNH2、γGluValol、γGluSer、γGluTau、γGluCysSMeO、γGluLeu、γGluIle、γGlutLeuおよびγGluCysSMe、以下、本発明に用いられるペプチド及びアミノ酸ともいうから選択される1種または2種以上を有効成分として含有する。これらのペプチド及びアミノ酸は、前述したスクリーニング方法によっても得られうる。ここに、アミノ酸とは、GlyAlaValLeuIleSerThrCysMetAsnGlnProHypなどの中性アミノ酸、AspGluなどの酸性アミノ酸、LysArgHisなどの塩基性アミノ酸、PheTyrTrpなどの芳香族アミノ酸や、ホモセリン、シトルリン、オルニチン、αアミノ酪酸、ノルバリン、ノルロイシン、タウリンなども含有する。本明細書においてアミノ基残基の略号は以下のアミノ酸を意味する。1Gly:グリシン2Ala:アラニン3Val:バリン4Leu:ロイシン5Ile:イソロイシン6Met:メチオニン7Phe:フェニルアラニン8Tyr:チロシン9Trp:トリプトファン10His:ヒスチジン11Lys:リジン12Arg:アルギニン13Ser:セリン14Thr:トレオニン15Asp:アスパラギン酸16Glu:グルタミン酸17Asn:アスパラギン18Gln:グルタミン19Cys:システイン20Pro:プロリン21Orn:オルニチン22Sar:サルコシン23Cit:シトルリン24N-Val:ノルバリン25N-Leu:ノルロイシン26Abu:α-アミノ酪酸27Tau:タウリン28Hyp:ヒドロキシプロリン29t-Leu:tert-ロイシンまた、アミノ酸誘導体とは、上記アミノ酸の各種誘導体であって、例えば、特殊アミノ酸や非天然アミノ酸、アミノアルコール、或いは末端カルボニル基やアミノ基、システインのチオール基などのアミノ酸側鎖が各種置換基により置換したものが挙げられる。置換基としては、アルキル基、アシル基、水酸基、アミノ基、アルキルアミノ基、ニトロ基、スルフォニル基や各種保護基などが挙げられ、例えば、ArgNO2:N-γ-ニトロアルギニン、CysSNO:S-ニトロシステイン、CysS-Me:S-メチルシステイン、CysS-allyl:S-アリルシステイン、Val-NH2:バリンアミド、Val-ol:バリノール2-アミノ-3-メチル-1-ブタノールなどが含まれる。尚、本明細書において、γ-Glu-CysSNO-Glyは下記の構造式を有するものであり、上記γ-Glu-MetOおよびγ-Glu-CysS-MeO式中のOはスルフォキシド構造であることを意味する。γGluのとは、グルタミン酸のγ位のカルボキシ基を介して他のアミノ酸が結合していることを意味する。γGluXGlyXはCysを除くアミノ酸又はアミノ酸誘導体を表す、γGluValY、γGluAla、γGluGly、γGluCys、γGluMet、γGluThr、γGluVal、γGluOrn、AspGly、CysGly、CysMet、GluCys、GlyCys、LeuAsp、DCys、γGluMet、γGluγGluVal、γGluValNH2、γGluValol、γGluSer、γGluTau、γGluCysSMeO、γGluLeu、γGluIle、γGlutLeuおよびγGluCysSMeはコク味を付与する。従って、γGluXGlyXはCysを除くアミノ酸又はアミノ酸誘導体を表す、γGluValY、γGluAla、γGluGly、γGluCys、γGluMet、γGluThr、γGluVal、γGluOrn、AspGly、CysGly、CysMet、GluCys、GlyCys、LeuAsp、DCys、γGluMet、γGluγGluVal、γGluValNH2、γGluValol、γGluSer、γGluTau、γGluCysSMeO、γGluLeu、γGluIle、γGlutLeuおよびγGluCysSMe以下、本発明に用いられるペプチド又はアミノ酸ともいうはコク味付与剤として用いることができる。本発明に用いられるペプチド又はアミノ酸は単独で用いてもよく、また任意の2種又は3種以上を混合して用いることもできる。これらの中でも、γGluXGlyXはCys、Cys、Gly、Cys、AbuまたはSerである、又はγGluValYの構造式を有する化合物が好ましい。なお、これらのうち、γGluXGlyXはAsnGlnHisLysOrnまたはArgである、及びγGluValYについては、本発明者らによって新たに合成された新規物質であって、本発明はこれらについての化合物の発明をも包含する。これら化合物のうち、中でも好ましい化合物は、γGluXGlyXはAsnGlnHisLysOrnまたはArgである、及びγGluValYである。公知の呈味ペプチドは、約02MSGの閾値はその110が閾値濃度呈味を感知できる最低濃度であって実用性に乏しかったがJAgrFoodChemvol23No14953、本発明の化合物は、00001~01程度の極めて低濃度から実用的なコク味増強活性を示し、非常に活性が高い極めて有用な化合物である。上記本発明に用いられるペプチド又はアミノ酸は、市販されているものであれば、市販品を用いることが可能である。また、ペプチドは、1化学的に合成する方法、又は2酵素的な反応により合成する方法等の公知手法を適宜用いることによって取得することができる。本発明において用いられるペプチドは、含まれるアミノ酸の残基数が2~3残基と比較的短いので、化学的に合成する方法が簡便である。化学的に合成する場合は、該オリゴペプチドをペプチド合成機を用いて合成あるいは半合成することにより行うことができる。化学的に合成する方法としては、例えばペプチド固相合成法が挙げられる。そのようにして合成したペプチドは通常の手段、例えばイオン交換クロマトグラフィー、逆相高速液体クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィー等によって精製することができる。このようなペプチド固相合成法、およびそれに続くペプチド精製はこの技術分野においてよく知られたものである。また、本発明において用いられるペプチドを、酵素的な反応により生産することも出来る。例えば、国際公開パンフレットWO2004/011653号に記載の方法を用いることが出来る。即ち、一方のアミノ酸又はジペプチドのカルボキシル末端をエステル化又はアミド化したアミノ酸又はジペプチドと、アミノ基がフリーの状態であるアミノ酸例えばカルボキシル基が保護されたアミノ酸とを、ペプチド生成酵素の存在下において反応せしめ、生成したジペプチド又はトリペプチドを精製することによっても生産することもできる。ペプチド生成酵素としては、ペプチドを生成する能力を有する微生物の培養物、該培養物より分離した微生物菌体、又は、該微生物の菌体処理物、又は、該微生物に由来するペプチド生成酵素が挙げられる。本発明において用いられるペプチド及びアミノ酸は塩の形態をも包含する。本発明のペプチド及びアミノ酸が塩の形態を成し得る場合、その塩は薬理学的に許容されるものであればよく、例えば、式中のカルボキシル基等の酸性基に対しては、アンモニウム塩、ナトリウム、カリウム等のアルカリ金属との塩、カルシウム、マグネシウム等のアルカリ土類金属との塩、アルミニウム塩、亜鉛塩、トリエチルアミン、エタノールアミン、モルホリン、ピロリジン、ピペリジン、ピペラジン、ジシクロへキシルアミン等の有機アミンとの塩、アルギニン、リジン等の塩基性アミノ酸との塩を挙げることができる。式中に塩基性基が存在する場合の塩基性基に対しては、塩酸、硫酸、リン酸、硝酸、臭化水素酸などの無機酸との塩、酢酸、クエン酸、安息香酸、マレイン酸、フマル酸、酒石酸、コハク酸、タンニン酸、酪酸、ヒベンズ酸、パモ酸、エナント酸、デカン酸、テオクル酸、サリチル酸、乳酸、シュウ酸、マンデル酸、リンゴ酸等の有機カルボン酸との塩、メタンスルホン酸、ベンゼンスルホン酸、p-トルエンスルホン酸等の有機スルホン酸との塩を挙げることができる。本発明のスクリ-ニング方法により得られるコク味付与物質、並びに本発明に用いられるペプチド及びアミノ酸から選ばれる1種または2種以上を有効成分として含有するコク味付与剤の使用方法としては、特に制限されず、調味料、食品、飲料等の飲食品に添加して用いることができる。本発明のスクリ-ニング方法により得られるコク味付与物質は、単独で、又はその他の各種添加物等と組み合わせて、調味料、食品、飲料等の飲食品に添加して用いることができる。また、本発明のコク味付与剤は、例えば、上記本発明に用いられるペプチド及びアミノ酸から選ばれる1種または2種以上のみで構成されていても良く、さらにその他、コク味付与活性を有する既存の化合物や各種添加物等を任意に添加され構成されることも可能である。この際、カルシウム受容体刺激活性を有する既存の化合物を1種または2種以上を添加してもよく、本発明はかかる組成物をも包含する。カルシウム受容体活性を有する既存の化合物としては、カルシウム、カドリニウムなどのカチオン、ポリアルギニン、ポリリジンなどの塩基性ペプチド、プトレッシン、スペルミン、スペルミジンなどのポリアミン、プロタミンなどのタンパク質、フェニルアラニン、グルタチオンなどのペプチド、シナカルセットなどが挙げられる。これらの化合物も許容される塩の形態をとっても良い。なお、グルタチオンがカルシウム受容体刺激活性を有することは本発明者らにより発見された。また、本発明者らは、本発明のコク味付与剤に加えて、グルタチオンなどの既存のコク味付与活性を有する化合物についても、カルシウム受容体活性化作用を有する化合物との併用により、コク味付与活性が向上されることをも見出した。即ち、本発明は、グルタチオンなどの既知のコク味付与活性を有する化合物とカルシウム受容体刺激活性を有する化合物とを含有する組成物をも包含する。上記添加物としては、調味料、食品、飲料等の飲食品に添加配合できることが知られているものであれば特に限定されることはなく用いることができる。そのような添加物としては、例えば、香料、糖類、甘味料、食物繊維類、ビタミン類、グルタミン酸ナトリウムMSGなどのアミノ酸類、イノシン一リン酸IMPなどの核酸類、塩化ナトリウムなどの無機塩類、水などが挙げられる。本発明のスクリ-ニング方法により得られるコク味付与物質、又は本発明のコク味付与剤の飲食品に対する使用量は、コク味の付与に有効な量であればよく、用途に応じて適宜調節されるが、例えば、調味料、食品又は飲料の場合、本発明のコク味付与剤、又はコク味付与物質の合計量として調味料、食品又は飲料中に1質量ppb~99.9質量であり、好ましくは10質量ppb~99.9質量、より好ましくは10質量ppm~10質量程度である。従って、本発明のスクリ-ニング方法により得られるコク味付与物質又は本発明のコク味付与剤の1種または2種以上を、飲食品に対して1質量ppb~99.9質量、好ましくは10質量ppb~99.9質量、より好ましくは10質量ppm~10質量程度含有させるように添加することで、コク味が付与された飲食品を製造することができる。また、本発明のスクリ-ニング方法により得られるコク味付与物質又は本発明のコク味付与剤の1種または2種以上を1質量ppb~99.9質量含有してなる上記コク味が付与された調味料を、飲食品に対して0.01~10質量、好ましくは0.1~10質量含有させるように添加することでも、コク味が付与された飲食品を製造することができる。本発明のスクリ-ニング方法により得られるコク味付与物質又は本発明のコク味付与剤を、飲食品に添加する際の形態としては、乾燥粉末、ペースト、溶液などの物性に制限はない。以下、本発明を実施例により具体的に説明するが、本発明の範囲はこれら実施例に限定されるものではない。≪実施例1≫<遺伝子cRNAの調製>カルシウム受容体の遺伝子の調製は以下のように行った。NCBIに登録されたDNA配列カルシウム受容体:NM000388を元に、PCRに使う合成オリゴDNAフォワードプライマーN、及びリバースプライマーCを設計した表1配列番号1及び2。ヒト腎臓由来のcDNAClontech社製を材料として、表1hCASRN:配列番号1及びhCASRC:配列番号2に示すプライマーを合成し、PfuultraDNAPolymeraseStratagene社製を用い、以下の条件でPCRを実施した。94°Cで3分の後、94°Cで30秒、55°Cで30秒、72°Cで2分を35回繰り返した後、72°Cで7分の反応をした。PCRによって増幅がなされたかをアガロ-ス電気泳動法を行い、DNA染色試薬で染色した後、紫外線照射によって検出した。同時に電気泳動したサイズ既知のDNAマ-カ-と比較することで、PCR産物の鎖長を確認した。プラスミドベクタ-pBR322を制限酵素EcoRVTakara社製によって切断した。その切断部位にPCRによって増幅された遺伝子断片をLigationKitPromega社製を用いて連結した。この反応溶液でエシェリヒアコリDH5α株を形質転換し、PCR増幅産物がクロ-ニングされたプラスミドを保持する形質転換体を選抜した。PCR増幅産物をDNA塩基配列解析によって確認した。この組換えプラスミドを鋳型とし、cRNA作製キットAmbion社を用いてカルシウム受容体遺伝子のcRNAを作製した。≪実施例2≫<各種試料の調製>L型アミノ酸試料として、各々特級グレ-ドのアラニン、アルギニン、アスパラギン、アスパラギン酸、システイン、グルタミン、グルタミン酸、グリシン、ヒスチジン、イソロイシン、ロイシン、リジン、メチオニン、フェニルアラニン、プロリン、セリン、トレオニン、トリプトファン、チロシン、バリン、オルニチン、タウリン上記、味の素株式会社、ヒドロキシプロリンナカライテスク株式会社の23種類を用いた。D-CysおよびD-Trpナカライテスク株式会社及び塩化カルシウムは特級グレ-ドのものを用いた。また、ペプチド試料として、γ-Glu-Cys-Glyシグマアルドリッチジャパン株式会社、γ-Glu-CysSNO-Gly株式会社同仁化学研究所、γ-Glu-AlaBachemFeinchemikalienAG、γ-Glu-GlyBachemFeinchemikalienAG、γ-Glu-Cysシグマアルドリッチジャパン株式会社、γ-Glu-MetBachemFeinchemikalienAG、γ-Glu-Abu-GlyAbu:α-アミノ酪酸、BachemFeinchemikalienAG、γ-Glu-Thr国産化学株式会社、γ-Glu-Val国産化学株式会社、γ-Glu-Leu受託合成品、γ-Glu-Ile受託合成品、γ-Glu-Orn国産化学株式会社、Asp-Gly受託合成品、Cys-Gly受託合成品、Cys-Met受託合成品、Glu-Cys受託合成品、Gly-Cys受託合成品、Leu-Asp受託合成品、γ-Glu-Val-Val受託合成品、γ-Glu-Val-Glu受託合成品、γ-Glu-Val-Lys受託合成品、γ-Glu-γ-Glu-Val受託合成品、γ-Glu-Gly-Gly受託合成品、γ-Glu-Val-Phe受託合成品、γ-Glu-Val-Ser受託合成品、γ-Glu-Val-Pro受託合成品、γ-Glu-Val-Arg受託合成品、γ-Glu-Val-Asp受託合成品、γ-Glu-Val-Met受託合成品、γ-Glu-Val-Thr受託合成品、γ-Glu-Val-His受託合成品、γ-Glu-Val-Asn受託合成品、γ-Glu-Val-Gln受託合成品、γ-Glu-Val-Cys受託合成品、γ-Glu-Val-Orn受託合成品、γ-Glu-Ser-Gly受託合成品を用いた。グルタミン、システインは用事調製し、他の試料は調製後、-20°Cに保存した。ペプチドは純度90以上のものを用いた。γ-Glu-Cysのみ純度80以上のものを用いた。各試料を溶解した後、pHが酸性、アルカリ性のものについては、NaOH、HClを用いて中性前後に調整した。アミノ酸、ペプチドの溶解液、アフリカツメガエル卵母細胞の調製用の溶液、卵母細胞の培養用の溶液は、以下の組成のものを使用した。NaCl96mM/KCl2mM/MgCl21mM/CaCl21.8mM/Hepes5mM/pH=7.2。≪実施例3≫<γ-Glu-Val-Glyの合成>Boc-Val-OH8.69g,40.0mmolとGly-OBzlHCl8.07g,40.0mmolを塩化メチレン100mlに溶解し、溶液を0°Cに保った。トリエチルアミン6.13ml,44.0mmol、HOBt1-Hydroxybenzotriazole,6.74g,44.0mmol及びWSCHCl1-Ethyl-3-3-dimethylaminopropylcarbodiimideHydrochloride,8.44g,44.0mmolを溶液に加え、室温で一夜撹拌した。反応液を減圧濃縮し、残渣を酢酸エチル200mlに溶解した。溶液を水50ml、5クエン酸水溶液50mlx2回、飽和食塩水50ml、5炭酸水素ナトリウム水溶液50mlx2回、飽和食塩水50mlで洗浄した。有機層を無水硫酸マグネシウムで乾燥し、硫酸マグネシウムを濾過して除き、濾液を減圧濃縮した。残渣を酢酸エチル-n-ヘキサンから再結晶してBoc-Val-Gly-OBzl13.2g,36.2mmolを白色結晶として得た。Boc-Val-Gly-OBzl5.47g,15.0mmolを4N-HCl/ジオキサン溶液40mlに加え、室温で50分撹拌した。ジオキサンを減圧濃縮で除き、残渣にn-ヘキサン30mlを加え減圧濃縮した。この操作を3回繰り返し、H-Val-Gly-OBzlHClを定量的に得た。上記H-Val-Gly-OBzlHCl及びZ-Glu-OBzl5.57g,15.0mmolを塩化メチレン50mlに溶解し、溶液を0°Cに保った。トリエチルアミン2.30ml,16.5mmol、HOBt1-Hydroxybenzotriazole,2.53g,16.5mmol及びWSCHCl1-Ethyl-3-3-dimethylaminopropylcarbodiimideHydrochloride,3.16g,16.5mmolを溶液に加え、室温で二夜撹拌した。反応液を減圧濃縮し、残渣を加熱した酢酸エチル1500mlに溶解した。溶液を水200ml、5クエン酸水溶液200mlx2回、飽和食塩水150ml、5炭酸水素ナトリウム水溶液200mlx2回、飽和食塩水150mlで洗浄した。有機層を無水硫酸マグネシウムで乾燥し、硫酸マグネシウムを濾過して除き、濾液を減圧濃縮した。析出した結晶を濾取、減圧乾燥してZ-GluVal-Gly-OBzl-OBzl6.51g,10.5mmolを白色結晶として得た。上記Z-GluVal-Gly-OBzl-OBzl6.20g,10.03mmolをエタノール200mlに懸濁し、10パラジウム炭素1.50gを加え、水素雰囲気下に55°Cで5時間還元反応を行った。この間、全量で100mlの水を徐々に加えた。触媒を桐山ロートで濾過して除き、濾液を半分に減圧濃縮した。反応液を更にメンブランフィルターで濾過し、濾液を減圧濃縮した。残渣を少量の水に溶かした後にエタノールを加えて結晶を析出させ、結晶を濾過して集め減圧乾燥してγ-Glu-Val-Glyの白色粉末2.85g,9.40mmolを得た。ESI-MS:MH=304.1.1H-NMR400MHz,D2Oδppm:0.873H,d,J=6.8Hz,0.883H,d,J=6.8Hz,1.99-2.093H,m,2.38-2.512H,m,3.721H,t,J=6.35Hz,3.861H,d,J=17.8Hz,3.801H,d,J=17.8Hz,4.071H,d,J=6.8Hz.≪実施例4≫<γ-Glu-CysS-Me-Glyの合成[CysS-Me:S-メチルシステイン]>還元型グルタチオン15.0g,48.8mmolを水45mlに加え、窒素を吹き込みながら水酸化ナトリウム4.52g,2.2当量,107mmolを少しずつ加えた。ヨウ化メチル4.56ml,1.5当量,73mmolを加え、密栓して室温で2時間撹拌した。濃塩酸で反応液のpHを2~3に調整し、エタノール150mlを加え冷蔵庫に一夜保存した。油状物が分離したので、上澄みを除いた。残った油状物を水に溶かしエタノールを徐々に加えると、一部結晶を伴う油状物が析出したので再度上澄みを除いた。残渣を水300mlに溶解し、イオン交換樹脂Dowex1-acetate,400mlを充填したカラムに吸着させ、水洗した後に1N-酢酸水溶液で溶出した。溶出液を減圧濃縮し、水-エタノールから再沈殿させ、γ-Glu-CysS-Me-Glyの白色粉末5.08g,15.8mmolを得た。FAB-MS:MH=322.1H-NMR400MHz,D2Oδppm:2.143H,s,2.15-2.222H,m,2.50-2.582H,m,2.861H,dd,J=9.0Hz,J=14.0Hz,3.031H,dd,J=5.0Hz,J=14.0Hz,3.841H,t,J=6.5Hz,3.992H,s,4.591H,dd,J=5.0Hz,J=9.0Hz.≪実施例5≫<その他ペプチドの合成>γ-Glu-MetO、γ-Glu-Val-NH2、γ-Glu-Val-ol、γ-Glu-Ser、γ-Glu-Tau、γ-Glu-CysS-MeO、γ-Glu-t-Leu、γ-Glu-CysS-allyl-Gly、γ-Glu-CysS-Meは実施例3および実施例4に準じて合成した。≪実施例6≫<カルシウム受容体の活性化作用の評価>カルシウム受容体の活性化作用の評価には、アフリカツメガエル卵母細胞発現系を用いたCa濃度イオン依存性Clイオン電流測定法を用いた。カルシウム受容体を発現させたアフリカツメガエル卵母細胞に、各活性化剤を添加すると、細胞内のCaイオンが増加する。次にCa濃度イオン依存性Clチャネルが開き、イオン電流として細胞内電流値が変化する。この細胞内電流値の変化を測定することで、カルシウム受容体の活性化作用の有無を知り得ることができる。具体的には、アフリカツメガエル腹部を切開し、卵塊を取り出した後、1コラゲナ-ゼ溶液により20°Cで2時間処理することで個々の卵母細胞を得た。1個あたりの卵母細胞に、マイクロガラスキャピラリ-を用いて50nlの1μg/μl受容体cRNAもしくは50nlの滅菌水を導入し、18°Cで2~3日培養した。培養時には、実施例2で示した溶液に2mMピルビン酸と10U/mlペニシリンと10μg/mlストレプトマイシンを加えたものを使用した。培養後、cRNAを注入した卵母細胞もしくは滅菌水を注入した卵母細胞に対し、試験溶液を添加した。電気生理学的測定は、増幅器Geneclamp500Axon社製および記録用ソフトAxoScope9.0Axon社製を用いて行った。卵母細胞を2電極膜電位固定法により-70mVに膜電位固定し、Ca濃度イオン依存性Clイオンを介した細胞内電流を測定した。細胞内電流の最大値を応答電流値とした。≪実施例7≫<カルシウム受容体に対するカルシウムの活性化作用の評価>実施例6に記載した方法を用い、カルシウム受容体に対するカルシウムの活性化作用を評価した。すなわち、カルシウム受容体のcRNAもしくは滅菌水を注入した卵母細胞を調製し、2電極膜電位固定法により-70mVに膜電位固定した。膜電位固定された卵母細胞に、カルシウム2mM、5mM、10mM、20mMを添加し、Ca濃度イオン依存性Cl応答電流を測定した。結果は図1に示した。この結果より、卵母細胞に注入したカルシウム受容体のcRNAが機能的に発現していることが確認された。また、水を注入した卵母細胞は、高い濃度のカルシウムにも反応していないことから、卵母細胞自身にはカルシウム受容体が発現していないことが確認された。≪実施例8≫<カルシウム受容体に対するL型アミノ酸の活性化作用の評価>実施例6に記載した方法を用い、カルシウム受容体に対するL型アミノ酸の活性化作用を評価した。すなわち、カルシウム受容体のcRNAもしくは滅菌水を注入した卵母細胞を調製し、2電極膜電位固定法により-70mVに膜電位固定した。膜電位固定された卵母細胞に、アラニン10mM、アルギニン10mM、アスパラギン10mM、アスパラギン酸10mM、システイン10mM、グルタミン10mM、グルタミン酸10mM、グリシン10mM、ヒスチジン10mM、イソロイシン10mM、ロイシン10mM、リジン10mM、メチオニン10mM、フェニルアラニン10mM、プロリン10mM、セリン10mM、トレオニン10mM、トリプトファン10mM、チロシン10mM、バリン10mM、オルニチン10mM、タウリン10mM、又はヒドロキシプロリン10mMを添加し、Ca濃度イオン依存性Cl応答電流を測定した。結果は図2に示した。この結果より、システイン、ヒスチジン、フェニルアラニン、トリプトファン、チロシンがカルシウム受容体に対する明瞭な活性化作用を有することが示された。なお、上記アミノ酸についてはProcNatlAcadSciUSA.2000Apr25;979:4814-9で活性化作用が報告されている。≪実施例9≫<カルシウム受容体に対するD-システインの活性化作用の評価>実施例6に記載した方法を用い、カルシウム受容体に対するD-システインの活性化作用を評価した。すなわち、カルシウム受容体のcRNAもしくは滅菌水を注入した卵母細胞を調製し、2電極膜電位固定法により-70mVに膜電位固定した。膜電位固定された卵母細胞に、D-システイン10mM、L-システイン10mM、D-トリプトファン10mM又はL-トリプトファン10mMを添加し、Ca濃度イオン依存性Cl応答電流を測定した。結果は図3に示した。この結果より、D-システインがカルシウム受容体に対する明瞭な活性化作用を有することが示された。≪実施例10≫<カルシウム受容体に対するペプチドの活性化作用の評価>実施例6に記載した方法を用い、カルシウム受容体に対するペプチドの活性化作用を評価した。すなわち、カルシウム受容体のcRNAもしくは滅菌水を注入した卵母細胞を調製し、2電極膜電位固定法により-70mVに膜電位固定した。膜電位固定された卵母細胞に、γ-Glu-Cys-Gly50μM、γ-Glu-CysSNO-Gly50μM、γ-Glu-Ala50μM、γ-Glu-Gly500μM、γ-Glu-Cys50μM、γ-Glu-Met500μM、γ-Glu-Thr50μM、γ-Glu-Val50μM、γ-Glu-Orn500μM、Asp-Gly1mM、Cys-Gly1mM、Cys-Met1mM、Glu-Cys50μM、Gly-Cys500μM、Leu-Asp1mMを添加し、Ca濃度イオン依存性Cl応答電流を測定した。結果は図4に示した。この結果より、上記ペプチドは、カルシウム受容体に対する活性化作用を有することが示された。≪実施例11≫<カルシウム受容体に対するペプチドの活性化作用の評価>実施例10と同様に、カルシウム受容体に対するペプチドの活性化作用を評価した。膜に電位固定された卵母細胞に、表2の各ペプチドについて、1000μM、300μM、100μM、30μM、10μM、3μM、1μM、0.3μM、0.1μMを添加し、Ca濃度イオン依存性Cl応答電流を測定した。電流が検出された最低濃度を表2に活性として示した。この結果より、これら32種類のペプチドは、カルシウム受容体に対する活性化作用を有することが明らかとなった。≪実施例12≫<本発明に用いられるペプチド及びアミノ酸のコク味付与活性>カルシウム受容体活性化作用が見出された、γGluXGlyXはCys、Cys、Gly、Cys、AbuまたはSerである、γGluValY、γGluAla、γGluGly、γGluCys、γGluMet、γGluThr、γGluVal、γGluOrn、AspGly、CysGly、CysMet、GluCys、GlyCys、LeuAsp、DCys、γGluMet、γGluγGluVal、γGluValNH2、γGluValol、γGluSer、γGluTau、γGluCysSMeO、γGluLeu、γGluIle、γGlutLeuおよびγGluCysSMe、の中から代表例を選んで、官能評価試験によりコク味付与活性の有無を調べた。官能評価試験は以下のように実施した。グルタミン酸ナトリウム0.05g/dl、イノシン酸一リン酸0.05g/dl、塩化カルシウム1mMを含有する蒸留水に、試料としてアリインalliinSallylcysteinesulfoxide、コク味付与活性のコントロール、γ-Glu-Cys-Gly、γ-Glu-Cys、γ-Glu-Ala、又はγ-Glu-Valをそれぞれ0.2g/dlで混合した場合の、コク味付与活性の有無を判定した。なお試料溶解後に酸性を呈したサンプルについては、NaOHでpH6.8~7.2に合わせてから使用した。結果を表3に示した。≪実施例13≫<本発明に用いられるペプチドのコク味付与活性>カルシウム受容体活性化作用が見出されたペプチドについて定量的な官能評価試験によりコク味付与活性の強度を調べた。定量的官能評価試験は以下のように実施した。グルタミン酸ナトリウム0.05g/dl、イノシン酸一リン酸0.05g/dl、塩化ナトリウム0.5g/dlを含有する蒸留水に、試料としてγ-Glu-Cys-Glyグルタチオン、γ-Glu-Ala、γ-Glu-Met、又はγ-Glu-Valをそれぞれ0.1g/dlにて混合した場合の、コク味付与活性の強度を測定した。なお試料溶解後に酸性を呈したサンプルについては、NaOHでpH6.8~7.2に合わせて使用した。官能評点について、コントロール:0点、グルタチオン添加:3点として、n=3で実施し、結果を表4に示した。≪実施例14≫<本発明に用いられるペプチドのコク味付与活性>カルシウム受容体活性化作用が見出されたペプチドについて定量的な官能評価試験によりコク味付与活性の強度を調べた。定量的官能評価試験は以下のように実施した。グルタミン酸ナトリウム0.05g/dl、イノシン酸一リン酸0.05g/dl、塩化ナトリウム0.5g/dlを含有する蒸留水に、試料としてγ-Glu-Cys-Glyグルタチオン、γ-Glu-Cys、γ-Glu-Val、又はγ-Glu-Val-Glyをそれぞれ0.1g/dl、必要に応じて0.01g/dlにて混合した場合の、コク味付与活性の強度を測定した。なお試料溶解後に酸性を呈したサンプルについては、NaOHでpH6.8~7.2に合わせて使用した。官能評点について、コントロール:0点、グルタチオン添加:3点として、n=5で実施し、結果を表5に示した。≪実施例15≫<本発明に用いられるペプチドのコク味付与活性>カルシウム受容体活性化作用が見出されたペプチドについて定量的な官能評価試験によりコク味付与活性の強度を調べた。定量的官能評価試験は以下のように実施した。グルタミン酸ナトリウム0.05g/dl、イノシン酸一リン酸0.05g/dl、塩化ナトリウム0.5g/dlを含有する蒸留水に、試料としてγ-Glu-Cys-Glyグルタチオン、γ-Glu-Abu-Gly、又はγ-Glu-Val-Glyをそれぞれ0.1g/dl、もしくは0.01g/dlにて混合した場合の、コク味付与活性の強度を測定した。なお試料溶解後に酸性を呈したサンプルについては、NaOHでpH6.8~7.2に合わせて使用した。官能評点について、コントロール:0点、グルタチオン添加:3点として、n=12で実施し、結果を表6に示した。≪実施例16≫<本発明に用いられるペプチドの基本味に対する活性>カルシウム受容体活性化作用が見出されたペプチドについて定量的な官能評価試験により基本味に対する活性の強度を調べた。定量的官能評価試験は以下のように実施した。うま味標準液としてグルタミン酸ナトリウム0.2g/dl、甘味標準液としてショ糖5g/dl、塩味標準液として塩化ナトリウム0.7g/dl、酸味標準液としてクエン酸0.05g/dlを含有する蒸留水に、試料としてγ-Glu-Cys-Glyグルタチオン、又はγ-Glu-Val-Glyをそれぞれ0.0001~1g/dlにて混合した場合の、それぞれ基本味に対する活性の強度を測定した。なお試料溶解後に試料無添加標準液に対し酸性を呈したサンプルについては、NaOHで標準液のpHに対しpH±0.2の幅に合わせて使用した。官能評点について、コントロール:0点、やや強い:1点、強い:2点として、n=12で実施した。上記添加濃度で幅広く基本味に対し強化活性を示した。代表的な濃度での結果を表7に示した。≪実施例17≫<本発明に用いられるペプチドのコンソメスープにおけるコク味付与活性>カルシウム受容体活性化作用が見出されたペプチドについて定量的な官能評価試験によりコンソメスープにおけるコク味付与活性の強度を調べた。定量的官能評価試験は以下のように実施した。コンソメスープ粉末食塩35、グルタミン酸ナトリウム18、イノシン酸一リン酸02、白コショウパウダー03、黒コショウパウダー05、ビーフエキスパウダー80、白ワインパウダー30、セロリパウダー20、白菜エキスパウダー80、玉葱エキスパウダー25、乳糖255を5g/dlで溶解し、コンソメスープを調製した。このコンソメスープに対し、試料としてγ-Glu-Cys-Glyグルタチオン、又はγ-Glu-Val-Glyをそれぞれ0.0001~1g/dlにて混合した場合の、それぞれコク味付与活性の強度を測定した。なお試料溶解後に試料無添加コンソメスープに対し酸性を呈したサンプルについては、NaOHでコントロールに対しpH±0.2の幅に合わせて使用した。官能評点について、コントロール:0点、強い:3点、非常に強い:5点として、n=12で実施した。上記添加濃度で幅広くコク味付与活性を示したが、代表的な濃度での結果を表8に示した。≪実施例18≫<本発明に用いられるペプチドのすまし汁におけるコク味付与活性>カルシウム受容体活性化作用が見出されたペプチドについて定量的な官能評価試験によりすまし汁におけるコク味付与活性の強度を調べた。定量的官能評価試験は以下のように実施した。かつお昆布だしに、濃口醤油0.5g/dl、食塩0.6g/dlを添加し、すまし汁を調整した。このすまし汁に対し、試料としてγ-Glu-Cys-Glyグルタチオン、又はγ-Glu-Val-Glyをそれぞれ0.0001~1g/dlにて混合した場合の、それぞれコク味付与活性の強度を測定した。なお試料溶解後に試料無添加すまし汁に対し酸性を呈したサンプルについては、NaOHでコントロールに対しpH±0.2の幅に合わせて使用した。官能評点について、コントロール:0点、強い:3点、非常に強い:5点として、n=12で実施した。上記添加濃度で幅広くコク味付与活性を示したが、代表的な濃度での結果を表9に示した。≪実施例19≫<本発明に用いられるペプチドのコーンスープにおけるコク味付与活性>カルシウム受容体活性化作用が見出されたペプチドについて定量的な官能評価試験によりコーンスープにおけるコク味付与活性の強度を調べた。定量的官能評価試験は以下のように実施した。市販コーンスープに対し、試料としてγ-Glu-Cys-Glyグルタチオン、又はγ-Glu-Val-Glyをそれぞれ0.0001~1g/dlにて混合した場合の、それぞれコク味付与活性の強度を測定した。なお試料溶解後に試料無添加コーンスープに対し酸性を呈したサンプルについては、NaOHでコントロールに対しpH±0.2の幅に合わせて使用した。官能評点について、コントロール:0点、強い:3点、非常に強い:5点として、n=12で実施した。上記添加濃度で幅広くコク味付与活性を示したが、代表的な濃度での結果を表10に示した。≪実施例20≫<本発明に用いられるペプチドのカレーソースにおけるコク味付与活性>カルシウム受容体活性化作用が見出されたペプチドについて定量的な官能評価試験によりカレーソースにおけるコク味付与活性の強度を調べた。定量的官能評価試験は以下のように実施した。市販カレールーを用い定法に従い調整したカレーソースに対し、試料としてγ-Glu-Cys-Glyグルタチオン、又はγ-Glu-Val-Glyをそれぞれ0.0001~1g/dlにて混合した場合の、それぞれコク味付与活性の強度を測定した。なお試料溶解後に試料無添加カレーソースに対し酸性を呈したサンプルについては、NaOHでコントロールに対しpH±0.2の幅に合わせて使用した。官能評点について、コントロール:0点、強い:3点、非常に強い:5点として、n=12で実施した。上記添加濃度で幅広くコク味付与活性を示したが、代表的な濃度での結果を表11に示した。≪実施例21≫<本発明に用いられるペプチドと他の既知のカルシウム受容体活性化剤等の添加物を併用した場合おけるコク味付与活性>カルシウム受容体活性化作用が見出されたペプチドについて、他の既知のカルシウム受容体活性化剤等の添加物を併用した場合の定量的な官能評価試験によりコク味付与活性の強度を調べた。定量的官能評価試験は以下のように実施した。グルタミン酸ナトリウム0.05g/dl、イノシン酸一リン酸0.05g/dl、塩化ナトリウム0.5g/dlを含有する蒸留水に、ペプチド試料としてγ-Glu-Cys-Glyグルタチオン又はγ-Glu-Val-Glyをそれぞれ0.0001~1g/dlにて混合した場合と、更に他のカルシウム受容体活性化剤乳酸カルシウム、プロタミン、ポリリジン、GABAを併用した場合添加濃度0.0001~1g/dlのコク味付与活性の強度を測定した。なお試料溶解後に酸性を呈したサンプルについては、NaOHでpH6.8~7.2に合わせて使用した。官能評点について、コントロール:0点、強い005gdlγGluCysGlyおよび0005gdlγGluValGlyの力価として:3点、非常に強い005gdlγGluCysGlyおよび0005gdlγGluValGlyの2倍力価として:6点として、n=12で実施した。上記添加濃度で幅広くコク味付与活性を示したが、代表的な濃度での結果を表12に示した。この結果、本発明のコク味付与剤に加えて、既知のコク味付与活性を有する化合物であるグルタチオンにおいても、カルシウムなどの既知のカルシウム受容体活性化剤などとの併用により、コク味付与活性が向上した。"