"流路に血液を流して血小板凝集を誘発することにより血小板機能を測定するためのマイクロチップであって、内部に設けられた流路を有し、前記流路の少なくとも一部は血小板接着のためにコラーゲンがコーティングされており、複数の壁が該流路における血液の流れる方向に沿って延在し且つ該流路の幅を分割して流路分割部を形成し、該壁は表面粗さRaが10~200nmになるような処理が施されていることを特徴とする、マイクロチップ。表面粗さRaが10~200nmになるような処理は、プラズマ照射、または紫外線照射によるものである、請求項1に記載のマイクロチップ。流路のうち、流路分割部以外の部分の表面粗さは10nm未満であることを特徴とする、請求項1または2に記載のマイクロチップ。前記マイクロチップは、流路に血液を一定の速度で流して血小板凝集塊を形成させながら血液の流入圧を測定したときに、耐圧性が80kPa以上である、請求項1ないし3のいずれか一項に記載のマイクロチップ。さらに、流路分割部の上流に不純物流入防止部が設けられたことを特徴とする、請求項1ないし4のいずれか一項に記載のマイクロチップ。請求項1ないし5のいずれか一項に記載のマイクロチップを含む、血小板機能検査装置。血液を収容するための容器と、血液を容器からマイクロチップ内の流路に送液するための送液ポンプと、該ポンプにかかる圧力を測定する圧力センサーをさらに備えた、請求項6に記載の血小板機能検査装置。マイクロチップ内部のコラーゲンコート部の下流にコラーゲンコート部を通過した血液廃液を貯留する廃液貯留部を備えた、請求項6または7に記載の血小板機能検査装置。請求項1ないし5のいずれか一項に記載のマイクロチップまたは請求項6ないし8のいずれか一項に記載の血小板機能検査装置の流路に血液を通過させ、流路分割部およびコラーゲンコート部において血小板凝集を惹起させつつ、該血液の流路への流入圧を測定することによって血小板の機能を検査することを特徴とする、血小板機能検査方法。[発明の効果]本発明の請求項1に係る血小板機能用マイクロチップによれば、マイクロチップ内部の流路の一部に、コラーゲンコート部と、該流路における血液の流れる方向に沿って延在し且つ該流路の幅を複数に分割する流路分割壁を備えた流路分割部とが設けられ、該流路分割壁は表面粗さRaが10~200nmになるような処理が施されているため、コラーゲン上において形成された血小板凝集塊が流路分割部で安定化され、より強く安定な圧力上昇が引き起こされてデータの再現性が向上する。強い圧力上昇が起こることによって、血小板凝集塊の強固さ、または脆弱さ、およびその安定性持続性を評価する事が可能である。本発明の請求項2に係る血小板機能用マイクロチップによれば、表面粗さRaが10~200nmになるような処理は、プラズマ照射、または紫外線照射によるものであるため、流路分割壁表面の物理的性状表面の粗さだけでなく化学的性状水酸基、イミド基、アミド基などの官能基の導入も血小板凝集に適した状態にすることができる。本発明の請求項3に係る血小板機能用マイクロチップによれば、流路のうち、流路分割部以外の部分の表面粗さは10nm未満であるため、血小板易接着面コラーゲンコート部と流路分割部で特異的に血小板凝集塊の形成を促し、血小板凝集塊の形成を特異的に解析することができる。本発明の請求項4に係る血小板機能用マイクロチップによれば、流路に血液を一定の速度で流して血小板凝集塊を形成させながら血液の流入圧を測定したときに、耐圧性が80kPa以上であるため、より感度の高い測定が可能である。本発明の請求項5に係る血小板機能用マイクロチップによれば、流路分割部の上流に不純物流入防止部が設けられているため、試料中の不純物により測定誤差が生じにくく正確な測定が可能である。本発明の請求項6に係る血小板機能検査装置は、本発明の請求項1~5のいずれかに係る血小板機能用マイクロチップを備えるため、血小板凝集を効率よく促進し、血小板機能を短時間で高感度に測定できる。本発明の請求項7に係る血小板機能検査装置によれば、血液を収容するための容器と、血液を容器からマイクロチップ内の流路に送液するための送液ポンプと、該ポンプにかかる圧力を測定する圧力センサーを備えたものであるため、血小板機能を流入血液の圧力により定量的に評価できて好ましい。本発明の請求項8に係る血小板機能検査装置によれば、マイクロチップ内部のコラーゲンコート部の下流にコラーゲンコート部を通過した血液廃液を貯留する廃液貯留部を備えたものであるため、血液廃液を吸引して除去する必要がなく、簡便に検査を行うことができる。本発明の請求項9に係る血小板機能検査装置によれば、前記いずれかのマイクロチップまたは前記いずれかの血小板機能検査装置の流路に血液を通過させ、流路分割部およびコラーゲンコート部において血小板凝集を惹起させつつ、該血液の流路への流入圧を測定することによって血小板の機能を検査するため、血小板凝集を効率よく促進し、血小板機能を短時間で高感度に測定できる。本発明の血小板検査用マイクロチップの第1の形態例を示す図。本発明の血小板検査装置の第1の形態例を示す図。本発明の血小板検査用マイクロチップの第2の形態例を示す図。分割流路部分がプラズマ処理されたマイクロチップA試験例1、紫外線処理されたマイクロチップB試験例2、または未処理のマイクロチップC比較例1を有する血小板検査装置を用いて流入血液の圧力を調べた結果を示す図。流路分割壁がプラズマ処理されたマイクロチップを備えた血小板検査装置を用いてアスピリンの血小板凝集効果を調べた結果を示す図試験例3。縦軸は圧力kPa、横軸は時間分を示す。アスピリンを投与された被験者から採血された血液アスピリン投与とアスピリンを投与されない同一被験者から採血された血液コントロールとを9μl/分および27μl/分の流速で流して評価した。流路分割壁がプラズマ処理されないマイクロチップを備えた血小板検査装置を用いてアスピリンの血小板凝集効果を調べた結果を示す図比較例2。縦軸は圧力kPa、横軸は時間分を示す。アスピリンを投与された被験者から採血された血液アスピリン投与とアスピリンを投与されない同一被験者から採血された血液コントロールとを9μl/分および27μl/分の流速で流して評価した。まず、図面を参照して本発明の血小板検査用マイクロチップおよび血小板検査装置を説明する。ただし、本発明の血小板検査用マイクロチップおよび血小板検査装置は以下の態様に限定されない。なお、本発明において、血液とは、全血及び多血小板血漿を含む。図1は、本発明のマイクロチップの第1の形態例を示す概念図である。以下、図1に基づいて説明する。図1Aは、マイクロチップ1の流路101となる溝が表面に掘られた第1の基板100の平面図である。この溝の断面形状は、凹字状、U字状、V字状等任意である。血小板凝集塊は脆いため、圧力上昇を測定するためには溝の深さは10~200μm以下であることが望ましい。溝の幅は10μm~3mmであることが好ましい。そして、流路101となる溝の第1の端部流入口側端部と第2の端部排出口側端部の間の一部には、血液の流れる方向に沿って延在する複数の流路分割壁102が設けられ、該流路の幅を複数に分割する流路分割部103を形成する。また、流路分割壁102の間隔は200μm以下であることが望ましい。幅が200μm以下であれば血小板凝集塊が形成された場合、高血流、高ずり応力下においても血流に飛ばされず内部圧力を上昇させることが可能である。また、流路分割部103において、流路101の幅は流路分割壁102によって5つ以上に分割されていることが望ましい。すなわち、流路の幅が5本以上に分割されていれば、各分割流路の閉塞が平均化され、バラツキの少ないデータが得られやすい。なお、流路分割壁102の形状は、流路101の幅を複数に分割できさえすれば特に制限されない。流路分割壁102は、血小板凝集塊の接着性を向上させるため、表面粗さ中心線平均表面粗さ:Raが10~200nmになるような処理が施されている。特に血小板のサイズが1から2μm前後であることから、10~200nmの凸凹を導入すると、分割流路の形状を損なわず、血小板凝集塊の接着性が向上し好ましい。この処理はプラズマや紫外線照射などによるものであることが好ましい。血小板凝集塊の流路分割壁への接着性は、流路分割壁表面の物理的性状表面の粗さだけでなく表面の化学的性状水酸基、イミド基、アミド基などの官能基の導入の双方に依存すると考えられる。プラズマや紫外線照射によって処理することにより、表面粗さが大きくなるだけでなく、流路分割壁表面に官能基が導入されると考えられる。プラズマ処理としては、大気圧プラズマ、真空プラズマ、コロナ処理などが挙げられ、紫外線処理としてはエキシマレーザー、水銀ランプなどを用いた処理が挙げられる。特に大気圧プラズマであれば、安価な装置で連続的にプラズマ処理することができ好ましい。プラズマは流路分割部流路分割部に特異的に照射し、血小板易接着面コラーゲンコート部とその近傍に位置する流路分割部で特異的に血小板凝集塊の形成を促すことで、血小板凝集塊の形成を特異的に解析することが好ましい。健常人の血液をマイクロチップの流路に一定の速度で流して流路分割部に血小板凝集塊を形成させたとき、血液の流入圧は約80kPaまで上昇する。よってマイクロチップの耐圧性は80kPa以上であることが好ましい。流路分割部103の上流、すなわち、流路分割壁102と第1の端部流入口側端部の間の一部には、流路の幅方向に所定の間隔で複数の柱状体104が設置されており、これが不純物流入防止部105となる。柱状体同士の間隔隙間の長さは、血液は通過できるが、不純物は通過できない長さであればよいが、10~200μmが好ましい。柱状体の形状は特に制限されず、円柱、多角柱などが挙げられる。図1Bは、マイクロチップ1の流入口106および排出口107となる貫通孔が掘られた第2の基板110の平面図である。流入口106となる貫通孔および排出口107となる貫通孔の位置は、第1の基板100と積層されたときに、それぞれ、第1の基板100上の、流路101の第1の端部に相当する位置、流路101の第2の端部に相当する位置となっている。また、第2の基板110の裏面の、第1の基板100と積層されたときに第1の基板100上の流路分割壁102に被せられる位置にコラーゲンをコーティングすることで血小板易接着面108コラーゲンコート部が形成される。具体的には、コラーゲンは、図1Cに示す様に、流路分割壁102に被せられる位置に、安全を見て広幅に塗布される。なお、血小板易接着面コラーゲンコート部は流路の全長に及んでもよい。図1Cは、第1の基板100の溝と第2の基板110のコラーゲンコート部が内側になるように、第1の基板100と第2の第2の基板110が積層されたマイクロチップ1の平面図である。波線は、流路101がマイクロチップ1の内部に存在することを示す。なお、本発明のマイクロチップの第2の形態例では、図3に示されるように、図1のように第2の基板において流路の第2の端部に相当する位置に貫通孔を設けて排出口とする代わりに、第2の基板210において流路201の第2の端部に相当する位置に接続する溝を設けて、第1の基板200と貼り合わせることにより、血小板易接着面208コラーゲンコート部を通過した血液廃液を貯留する廃液貯留部207としてもよい。廃液貯留部207の容積を試験に用いる血液量よりも大きくすることにより、第1の形態例のように血液廃液を排出口からポンプ等で吸引して排出する必要がなく、より簡便な検査が可能である。なお、廃液貯留部207には貫通孔を設けてこれを空気穴209としてもよい。そして、マイクロチップ2の表面の空気穴209に相当する位置に血液吸収材を設置すれば、血液サンプルの量が多い場合でもマイクロチップ外に血液廃液が飛散することがない。血液吸収材としては、例えば、スポンジや布などを貼り付けることができる。なお、空気穴209に排出管を接続し、血液廃液を吸引除去してもよい。本発明のマイクロチップにおいて、血小板易接着面は、コーティングされたコラーゲンを用いるが、コラーゲンと組織トロンボプラスチンを含むものでも良い。血小板易接着面は血流によって流出しないようコラーゲンは血小板易接着面108,208に高い接着強度でコーティングされている。コラーゲンのコーティングは、例えば、特開平05-260950号公報やBlood.1995Apr1;857:1826-35.に記載されているように、コラーゲンを酸性溶液に溶解し、これを親水性が付与されたガラスやポリスチレン等の基板の所定の位置に塗布し、洗浄、乾燥するなどの方法にて簡便に高い接着強度でコーティングが可能である。疎水性の樹脂等にコートする場合には、樹脂表面を親水化処理した後、所望の領域にコラーゲン溶液を塗布し、自然乾燥ないしは減圧下にて乾燥することでコーティングすることが出来る。基材としてプラスチックを用いた場合は、表面を親水化処理し、所望の領域にコラーゲン溶液をピペットやシリンジ等のディスペンサーで塗布し、自然乾燥または減圧下で乾燥することでコラーゲンまたは組織トロンボプラスチンを含むコラーゲンを容易にコーティングすることが可能である。マイクロチップの材質は、金属、ガラスやプラスチック、シリコーン等が好ましい。また、血液観測特に画像解析に使用する観点からは透明な材質が好ましい。さらに、回路を形成する観点からはプラスチックが好ましく、透明なプラスチックが特に好ましい。材質をPDMSポリジメチルシロキサン等のシリコーン製とした場合には、基板同士の密着性に優れるため、第1の基板と第2の基板を接着剤などで接着しなくても圧着することで積層することが出来るが、マイクロチップの内部に高い圧力がかかる場合は、接着剤を用いることが好ましい。また、ポリ2-メトキシエチルアクリレートPMEAによっても簡便かつ効果的に意図しない部位での血液凝固を抑制する事が可能である。なお、マイクロチップの基板に設けられる溝や穴は、刃物やレーザー光線で堀ることもできるが、マイクロチップの材質がプラスチックである場合は、射出成型で形成することもできる。射出成型で形成すると、一定した品質のマイクロチップが効率よく作成できるので好ましい。本形態例のマイクロチップ1を用いた血小板機能検査の一例を図1Cに基づき説明する。第1の流入口106には図示しないチューブが接続され、チューブを介して図示しない血液リザーバー血液収容部及び送液ポンプが接続される。そして、接続されたポンプより該ポンプ内の液体をリザーバーに注入することで、該リザーバー内の血液がマイクロチップ1の流路に注入される。送液ポンプの液体はミネラルオイル又は生理食塩水などの血液より比重の小さい液体とし、送液ポンプで当該液体を血液があらかじめ充填されたリザーバーに導入し、該液体を血液の上に重層し、該液体をポンプで押し出すことで、血液が流路へ導入されるようにしてもよい。該液体の流入圧を測定することで血液の流路への流入圧を間接的に測定することができる。なお、リザーバーに予め充填された血液には血小板活性化試薬が混合されたものでもよい。血小板活性化試薬を乾燥又は液体状態でリザーバー内に予め入れておき、血液と混合することも可能である。血液は抗凝固処理されたものであることが好ましい。ここで、抗凝固処理に用いる抗凝固処理剤としては、クエン酸ナトリウムまたはカリウム、シュウ酸ナトリウムまたはカリウム、ACDAcidCitrateDextrose、エチレンジアミンテトラ酢酸EDTA塩などを挙げることができる。このような抗凝固処理剤は、粉末、凍結乾燥品、水溶液などの溶液として使用することができる。これらの抗凝固処理剤のうち、一般的な3.2クエン酸ナトリウムが容易に入手できることから好ましい。この場合、血液9容に対してこの抗凝固処理剤1容とするのが好ましい。その他の抗凝固処理剤としてはへパリン、ヒルジン、トロンビンアプタマー、コーン由来トリプシンインヒビター1977.J.Biol.Chem252.8105等の利用が可能である。なお、抗凝固処理剤は、複数用いられてもよい。用いる抗凝固剤がヒルジンの場合には、クエン酸による抗凝固処理の場合に比べ、血小板活性化試薬の処理が無くとも、より強固な血小板凝集が引き起こされるので、ずり応力依存的な血小板機能を測定するのに適している。クエン酸による抗凝固処理血液の場合には、血小板活性化試薬の刺激依存的な血小板機能測定が精度良く測定でき、抗血小板剤の評価などにより適している。抗凝固処理された血液を得る方法としては、シリンジまたは真空採血管に予め上記の抗凝固処理剤を入れて採血を行うか、または、採血直後の血液に抗凝固処理剤を速やかに加える等の方法で抗凝固処理した血液を得ることができる。さらに、ヘパリンを含む真空採血管等で採血した後、へパリナーゼと検査目的に適した抗凝固処理剤を加え、ヘパリナーゼでヘパリンを分解させ、測定目的に適した抗凝固処理剤と置き換えることも可能である。抗凝固処理された血液と血小板活性化試薬を混合する場合、用いられる血小板活性化試薬としては、ADP、コラーゲン、トロンビン、アラキドン酸およびリストセチン等が挙げられる。この場合、血小板活性化試薬の血小板活性化能の評価を行うこともできる。血小板活性化試薬は、微弱な血小板活性化が起こるような濃度で抗凝固処理された血液と混合する。微弱な血小板活性化が起こるような濃度とは、静止状態では不可逆的血小板凝集血小板二次凝集を引き起こさないような濃度、例えば、ADPの場合、0.001~5μMであり、アラキドン酸の場合、0.001~1mMである。但し、血小板機能の異常及び抗血小板剤の投与によりこれら血小板活性化試薬に対する反応性が明らかに低下している場合には、その低下具合を測定する場合には、これらの濃度を超えた血小板活性化試薬を加えて測定することが望ましい。流入口106から導入され、流路101を通過した血液は、流路分割部103を通過することで、ずり応力が生じ、血小板の活性化が増強され、血小板易接着面コラーゲンコート部にて粘着積層される。これにより、血液の流入圧が上昇するため、血液の流入圧をモニターすることで血液中に含まれる血小板の機能評価を行うことができる。また、流路分割部103を通過する血液の流速や性状を観測することによって、血小板機能の検査を行うことができる。なお、血液サンプル中の不純物は、不純物流入防止部105に留まり、流路分割部103に流入しないため、血小板凝集反応を阻害しない。検査に供した血液は、流路101の終端に設けられた排出口107から排出される。次に、マイクロチップ1を用いた本発明の血小板検査装置について説明する。図2は、マイクロチップ1を透明な基板で構成して組み込んだ本発明の血小板検査装置の第1の形態例である血小板検査装置Aの模式図である。以下、図2に基づいて第1の形態例を説明する。マイクロチップ1の流入口106には、抗凝固処理された血液が収容されたリザーバー109血液収容部が倒立して接続されており、リザーバー109にはミネラルオイルを供給する送液ポンプ111が接続されている。送液ポンプ111には図示しない圧力センサーが接続されている。そして、送液ポンプ111から、ミネラルオイルがリザーバー109内に圧入され、血液の上に重層され、血液をマイクロチップ1の流路101内に押し出す。血液は流路101を通過し、血小板易接着面108を有する流路分割部103に到達する。一方、血液サンプル中の不純物は不純物流入防止部105に留まる。流入圧力を送液ポンプ111に接続された圧力センサーによって測定することでより定量的な血小板機能検査が可能となる。また、流路分割部103における血小板の活性化血小板の粘着凝集などやそれに伴うキャピラリーの閉塞をカメラ113で観察することで血小板機能の検査を行うことができる。さらに、血液の流路101の通過時間または通過量を測定することによっても血小板機能検査を行うことができる。カメラ113は画像解析装置115に接続されており、それによって血小板活性化の様子を画像化したりすることができる。内部の血小板活性化を撮影することにより視覚的評価及び圧力上昇による血小板活性化の定量的検査の併用は、患者血液の状態を総合判断する上で非常に重要である。例えば、DIC等の病態において血小板が生体内で既に活性化を受けるとともに血小板が消耗し著しく減少しているケースにおいては、圧力上昇や閉塞時間は遅延される。そのようなケースにおいても、内部をカメラにより撮影することで検査開始直後から血小板易接着表面コラーゲンコート部への血小板の粘着及び凝集の上昇などを確認することができ、患者の血小板の状態を総合的に判断することが可能となる。カメラ113は流路101の血流方向に沿って移動可能なものでもよい。なお、キナクリン等によって血小板を蛍光標識して解析することもでき、その場合、蛍光発色による単位面積あたりの輝度を画像解析で観測することで観測結果を数値化し、データとして取得することが可能である。なお、マイクロチップ1はステージ状のヒーター112の上に設置されており、ヒーター112によって37°Cに加温することでより生体内に近い条件で測定を行うことができる。流路分割部103を通過した血液混合液は、排出口107から排出管114により円滑に排出される。以下に、具体的な実施例を挙げて本発明をより詳細に説明するが、本発明はこれに限定されるものではない。マイクロチップおよび血小板機能検査装置の作成図1Aに示す第1の基板100および図1Bに示す第2の基板110の2枚の透明な基板株式会社リッチェル製射出成型品を用意した。第1の基板100においては、流路101の長さは20mm、深さは40μm、幅は2mmとし、流路分割部103には、長さ15mm、幅40μm、高さ40μmの流路分割壁102を40μmの等間隔で設置し、この部分を流路分割部103とした。さらに、第1の端部より75mmの位置に直径50μmの円柱を100μm間隔で13本設置し、不純物流入防止部105とした。そして、流路分割部103をウェッジ株式会社PS601SW大気中プラズマ照射表面改質装置にて35mmの高さに照射ヘッドを設置し、コンベアを用いて4回プラズマ照射処理及びセン特殊光源株式会社製PL2002N18光表面処理装置によって紫外線ランプより30mmの距離から5分間紫外線照射した。未処理、プラズマ処理後、紫外線照射処理後のそれぞれの櫛領域の平滑性をZygo社製NewView6200非接触表面形状測定機によって解析した結果を表1に示す。PV:014×0105mm中の最大-最小の段差単位nmRa:平均からの高さの解離/測定ポイント数単位nm以上よりプラズマ処理、UV照射処理によって10~200nmのレベルでの表面の粗さが形成されていることがわかる。なお、下記の実験では流路分割部がプラズマ処理されたマイクロチップと、紫外線照射処理、未処理のマイクロチップを用いて行った。第2の基板100においては、流入口106および排出口107となる穴は内径2mm深さ2mmの断面円形の貫通孔とした。また、第2の基板110の、第1の基板100の流路分割部103と重なる位置に075mgmlのコラーゲンタイプI新田ゼラチン製を塗布し真空乾燥して血小板易接着面108とした。第1の基板100の流路101となる溝が開口する面と第2の基板110の血小板易接着面108を有する面を対向させてシランカップリング剤及び60°C3時間の熱圧着により貼り合せ、図1Cに示すマイクロチップ1とした。図2のように、作製したマイクロチップ1を、ステージ状のヒーター11237°Cに加温の上に設置し、マイクロチップ1の流入口106にリザーバー109を接続し、リザーバー109にはチューブを介してポンプ111を接続し、ポンプにかかる圧力を図示しない圧力センサーで測定した。排出口には排出管114を接続し、解析終了後の血液を排出できるようにした。また、マイクロチップ1の流路分割部103の上方には画像解析装置115が接続したカメラ113を設置し、流路分割部103における血小板活性化の様子を観察できるようにした。試験例1、2および比較例1健常人より採血した血液をヒルジン25μgmlによって抗凝固処理した。この抗凝固処理された血液を流路分割部がプラズマ処理されたマイクロチップ試験例1、紫外線照射されたマイクロチップ試験例2及び未処理のマイクロチップ比較例1の流路に流した。具体的には、リザーバー109に抗凝固処理された血液を充填し、ポンプ111にミネラルオイルを充填し、ポンプ111とリザーバー109を接続し、リザーバー109の先端はマイクロチップ1の流入口106に接続した。ポンプ111からミネラルオイルを18μl分の流速でリザーバーに注入して血液の上に重層することで、リザーバー内の血液を同様の流速にてマイクロチップ1に押し出して注入し、図示しない圧力センサーによってミネラルオイルの流入圧力すなわち、血液の流入圧力をそれぞれ3回ずつ測定した。結果をそれぞれ図4A、B及びCに示す。分割流路部分をプラズマ処理図4A、紫外線処理したマイクロチップ図4Bは未処理のマイクロチップ図4Cに比べより安定的な圧力上昇が促され、また圧力パターンのばらつきも少なかった。分割流路部がプラズマ処理及び紫外線照射処理によって血小板凝集塊の接着性が向上していることに起因するものと予測された。試験例3アスピリン100mg服用前後の検体から採血を行い、得られた血液をヒルジン25μgmlによって抗凝固処理した。この抗凝固処理された血液を流路分割部がプラズマ処理されたマイクロチップの流路に流した。具体的には、リザーバー109に抗凝固処理された血液アスピリン100mg服用前後を充填し、ポンプ111にミネラルオイルを充填し、ポンプ111とリザーバー109を接続し、リザーバー109の先端はマイクロチップ1の流入口106に接続した。ポンプ111からミネラルオイルを27μl分及び9μl分の流速でリザーバーに注入して血液の上に重層することで、リザーバー内の血液を同様の流速にてマイクロチップ1に押し出して注入し、図示しない圧力センサーによってミネラルオイルの流入圧力すなわち、血液の流入圧力を測定した。比較例2流路分割部がプラズマ処理されないマイクロチップを用いた以外は試験例3と同様の操作を行い、ミネラルオイルの流入圧力を測定した。試験例3と比較例2の結果をそれぞれ図5および6に示す。流路分割部がプラズマ処理されないマイクロチップを用いた場合は、圧力上昇が不十分でアスピリンの効果がほとんど判別できなかった。これに対し、流路分割部がプラズマ処理されたマイクロチップを用いた場合は、低流速で約50kPa、高流速で約80kPaまで圧力上昇が起こり、アスピリンの効果は十分判別できた。以上より、プラズマ照射により、より高い圧力上昇が起こり高流速の条件下での血小板凝集塊の安定性をより解析することが出来た。抗血小板作用を有するアスピリンは血小板凝集塊の形成速度よりも寧ろ形成された血小板凝集塊の安定性を低下させる効果を有することが分かる。本発明のマイクロチップによれば微量血液を用いて血液の血小板機能を調べることができるので、医療、診断、検査、研究などの分野において有用である。A...血小板検査装置;1、2...マイクロチップ;100,200...第1の基板;101,201...流路;102、202...流路分割壁;103、203...流路分割部;104,204...柱状体;105,205...不純物流入防止部;106,206...流入口;107...排出口;207...廃液貯留部;108,208...血小板易接着面コラーゲンコート部;109...リザーバー;209...空気穴排出口;110,210...第2の基板;111...ポンプ;112...ヒーター;113...カメラ;114...排出管;115...画像解析装置まず、図面を参照して本発明の血小板検査用マイクロチップおよび血小板検査装置を説明する。ただし、本発明の血小板検査用マイクロチップおよび血小板検査装置は以下の態様に限定されない。なお、本発明において、血液とは、全血及び多血小板血漿を含む。図1は、本発明のマイクロチップの第1の形態例を示す概念図である。以下、図1に基づいて説明する。図1Aは、マイクロチップ1の流路101となる溝が表面に掘られた第1の基板100の平面図である。この溝の断面形状は、凹字状、U字状、V字状等任意である。血小板凝集塊は脆いため、圧力上昇を測定するためには溝の深さは10~200μm以下であることが望ましい。溝の幅は10μm~3mmであることが好ましい。そして、流路101となる溝の第1の端部流入口側端部と第2の端部排出口側端部の間の一部には、血液の流れる方向に沿って延在する複数の流路分割壁102が設けられ、該流路の幅を複数に分割する流路分割部103を形成する。また、流路分割壁102の間隔は200μm以下であることが望ましい。幅が200μm以下であれば血小板凝集塊が形成された場合、高血流、高ずり応力下においても血流に飛ばされず内部圧力を上昇させることが可能である。また、流路分割部103において、流路101の幅は流路分割壁102によって5つ以上に分割されていることが望ましい。すなわち、流路の幅が5本以上に分割されていれば、各分割流路の閉塞が平均化され、バラツキの少ないデータが得られやすい。なお、流路分割壁102の形状は、流路101の幅を複数に分割できさえすれば特に制限されない。流路分割壁102は、血小板凝集塊の接着性を向上させるため、表面粗さ中心線平均表面粗さ:Raが10~200nmになるような処理が施されている。特に血小板のサイズが1から2μm前後であることから、10~200nmの凸凹を導入すると、分割流路の形状を損なわず、血小板凝集塊の接着性が向上し好ましい。この処理はプラズマや紫外線照射などによるものであることが好ましい。血小板凝集塊の流路分割壁への接着性は、流路分割壁表面の物理的性状表面の粗さだけでなく表面の化学的性状水酸基、イミド基、アミド基などの官能基の導入の双方に依存すると考えられる。プラズマや紫外線照射によって処理することにより、表面粗さが大きくなるだけでなく、流路分割壁表面に官能基が導入されると考えられる。プラズマ処理としては、大気圧プラズマ、真空プラズマ、コロナ処理などが挙げられ、紫外線処理としてはエキシマレーザー、水銀ランプなどを用いた処理が挙げられる。特に大気圧プラズマであれば、安価な装置で連続的にプラズマ処理することができ好ましい。プラズマは流路分割部流路分割部に特異的に照射し、血小板易接着面コラーゲンコート部とその近傍に位置する流路分割部で特異的に血小板凝集塊の形成を促すことで、血小板凝集塊の形成を特異的に解析することが好ましい。健常人の血液をマイクロチップの流路に一定の速度で流して流路分割部に血小板凝集塊を形成させたとき、血液の流入圧は約80kPaまで上昇する。よってマイクロチップの耐圧性は80kPa以上であることが好ましい。流路分割部103の上流、すなわち、流路分割壁102と第1の端部流入口側端部の間の一部には、流路の幅方向に所定の間隔で複数の柱状体104が設置されており、これが不純物流入防止部105となる。柱状体同士の間隔隙間の長さは、血液は通過できるが、不純物は通過できない長さであればよいが、10~200μmが好ましい。柱状体の形状は特に制限されず、円柱、多角柱などが挙げられる。図1Bは、マイクロチップ1の流入口106および排出口107となる貫通孔が掘られた第2の基板110の平面図である。流入口106となる貫通孔および排出口107となる貫通孔の位置は、第1の基板100と積層されたときに、それぞれ、第1の基板100上の、流路101の第1の端部に相当する位置、流路101の第2の端部に相当する位置となっている。また、第2の基板110の裏面の、第1の基板100と積層されたときに第1の基板100上の流路分割壁102に被せられる位置にコラーゲンをコーティングすることで血小板易接着面108コラーゲンコート部が形成される。具体的には、コラーゲンは、図1Cに示す様に、流路分割壁102に被せられる位置に、安全を見て広幅に塗布される。なお、血小板易接着面コラーゲンコート部は流路の全長に及んでもよい。図1Cは、第1の基板100の溝と第2の基板110のコラーゲンコート部が内側になるように、第1の基板100と第2の第2の基板110が積層されたマイクロチップ1の平面図である。波線は、流路101がマイクロチップ1の内部に存在することを示す。なお、本発明のマイクロチップの第2の形態例では、図3に示されるように、図1のように第2の基板において流路の第2の端部に相当する位置に貫通孔を設けて排出口とする代わりに、第2の基板210において流路201の第2の端部に相当する位置に接続する溝を設けて、第1の基板200と貼り合わせることにより、血小板易接着面208コラーゲンコート部を通過した血液廃液を貯留する廃液貯留部207としてもよい。廃液貯留部207の容積を試験に用いる血液量よりも大きくすることにより、第1の形態例のように血液廃液を排出口からポンプ等で吸引して排出する必要がなく、より簡便な検査が可能である。なお、廃液貯留部207には貫通孔を設けてこれを空気穴209としてもよい。そして、マイクロチップ2の表面の空気穴209に相当する位置に血液吸収材を設置すれば、血液サンプルの量が多い場合でもマイクロチップ外に血液廃液が飛散することがない。血液吸収材としては、例えば、スポンジや布などを貼り付けることができる。なお、空気穴209に排出管を接続し、血液廃液を吸引除去してもよい。本発明のマイクロチップにおいて、血小板易接着面は、コーティングされたコラーゲンを用いるが、コラーゲンと組織トロンボプラスチンを含むものでも良い。血小板易接着面は血流によって流出しないようコラーゲンは血小板易接着面108,208に高い接着強度でコーティングされている。コラーゲンのコーティングは、例えば、特開平05-260950号公報やBlood.1995Apr1;857:1826-35.に記載されているように、コラーゲンを酸性溶液に溶解し、これを親水性が付与されたガラスやポリスチレン等の基板の所定の位置に塗布し、洗浄、乾燥するなどの方法にて簡便に高い接着強度でコーティングが可能である。疎水性の樹脂等にコートする場合には、樹脂表面を親水化処理した後、所望の領域にコラーゲン溶液を塗布し、自然乾燥ないしは減圧下にて乾燥することでコーティングすることが出来る。基材としてプラスチックを用いた場合は、表面を親水化処理し、所望の領域にコラーゲン溶液をピペットやシリンジ等のディスペンサーで塗布し、自然乾燥または減圧下で乾燥することでコラーゲンまたは組織トロンボプラスチンを含むコラーゲンを容易にコーティングすることが可能である。マイクロチップの材質は、金属、ガラスやプラスチック、シリコーン等が好ましい。また、血液観測特に画像解析に使用する観点からは透明な材質が好ましい。さらに、回路を形成する観点からはプラスチックが好ましく、透明なプラスチックが特に好ましい。材質をPDMSポリジメチルシロキサン等のシリコーン製とした場合には、基板同士の密着性に優れるため、第1の基板と第2の基板を接着剤などで接着しなくても圧着することで積層することが出来るが、マイクロチップの内部に高い圧力がかかる場合は、接着剤を用いることが好ましい。また、ポリ2-メトキシエチルアクリレートPMEAによっても簡便かつ効果的に意図しない部位での血液凝固を抑制する事が可能である。なお、マイクロチップの基板に設けられる溝や穴は、刃物やレーザー光線で堀ることもできるが、マイクロチップの材質がプラスチックである場合は、射出成型で形成することもできる。射出成型で形成すると、一定した品質のマイクロチップが効率よく作成できるので好ましい。本形態例のマイクロチップ1を用いた血小板機能検査の一例を図1Cに基づき説明する。第1の流入口106には図示しないチューブが接続され、チューブを介して図示しない血液リザーバー血液収容部及び送液ポンプが接続される。そして、接続されたポンプより該ポンプ内の液体をリザーバーに注入することで、該リザーバー内の血液がマイクロチップ1の流路に注入される。送液ポンプの液体はミネラルオイル又は生理食塩水などの血液より比重の小さい液体とし、送液ポンプで当該液体を血液があらかじめ充填されたリザーバーに導入し、該液体を血液の上に重層し、該液体をポンプで押し出すことで、血液が流路へ導入されるようにしてもよい。該液体の流入圧を測定することで血液の流路への流入圧を間接的に測定することができる。なお、リザーバーに予め充填された血液には血小板活性化試薬が混合されたものでもよい。血小板活性化試薬を乾燥又は液体状態でリザーバー内に予め入れておき、血液と混合することも可能である。血液は抗凝固処理されたものであることが好ましい。ここで、抗凝固処理に用いる抗凝固処理剤としては、クエン酸ナトリウムまたはカリウム、シュウ酸ナトリウムまたはカリウム、ACDAcidCitrateDextrose、エチレンジアミンテトラ酢酸EDTA塩などを挙げることができる。このような抗凝固処理剤は、粉末、凍結乾燥品、水溶液などの溶液として使用することができる。これらの抗凝固処理剤のうち、一般的な3.2クエン酸ナトリウムが容易に入手できることから好ましい。この場合、血液9容に対してこの抗凝固処理剤1容とするのが好ましい。その他の抗凝固処理剤としてはへパリン、ヒルジン、トロンビンアプタマー、コーン由来トリプシンインヒビター1977.J.Biol.Chem252.8105等の利用が可能である。なお、抗凝固処理剤は、複数用いられてもよい。用いる抗凝固剤がヒルジンの場合には、クエン酸による抗凝固処理の場合に比べ、血小板活性化試薬の処理が無くとも、より強固な血小板凝集が引き起こされるので、ずり応力依存的な血小板機能を測定するのに適している。クエン酸による抗凝固処理血液の場合には、血小板活性化試薬の刺激依存的な血小板機能測定が精度良く測定でき、抗血小板剤の評価などにより適している。抗凝固処理された血液を得る方法としては、シリンジまたは真空採血管に予め上記の抗凝固処理剤を入れて採血を行うか、または、採血直後の血液に抗凝固処理剤を速やかに加える等の方法で抗凝固処理した血液を得ることができる。さらに、ヘパリンを含む真空採血管等で採血した後、へパリナーゼと検査目的に適した抗凝固処理剤を加え、ヘパリナーゼでヘパリンを分解させ、測定目的に適した抗凝固処理剤と置き換えることも可能である。抗凝固処理された血液と血小板活性化試薬を混合する場合、用いられる血小板活性化試薬としては、ADP、コラーゲン、トロンビン、アラキドン酸およびリストセチン等が挙げられる。この場合、血小板活性化試薬の血小板活性化能の評価を行うこともできる。血小板活性化試薬は、微弱な血小板活性化が起こるような濃度で抗凝固処理された血液と混合する。微弱な血小板活性化が起こるような濃度とは、静止状態では不可逆的血小板凝集血小板二次凝集を引き起こさないような濃度、例えば、ADPの場合、0.001~5μMであり、アラキドン酸の場合、0.001~1mMである。但し、血小板機能の異常及び抗血小板剤の投与によりこれら血小板活性化試薬に対する反応性が明らかに低下している場合には、その低下具合を測定する場合には、これらの濃度を超えた血小板活性化試薬を加えて測定することが望ましい。流入口106から導入され、流路101を通過した血液は、流路分割部103を通過することで、ずり応力が生じ、血小板の活性化が増強され、血小板易接着面コラーゲンコート部にて粘着積層される。これにより、血液の流入圧が上昇するため、血液の流入圧をモニターすることで血液中に含まれる血小板の機能評価を行うことができる。また、流路分割部103を通過する血液の流速や性状を観測することによって、血小板機能の検査を行うことができる。なお、血液サンプル中の不純物は、不純物流入防止部105に留まり、流路分割部103に流入しないため、血小板凝集反応を阻害しない。検査に供した血液は、流路101の終端に設けられた排出口107から排出される。次に、マイクロチップ1を用いた本発明の血小板検査装置について説明する。図2は、マイクロチップ1を透明な基板で構成して組み込んだ本発明の血小板検査装置の第1の形態例である血小板検査装置Aの模式図である。以下、図2に基づいて第1の形態例を説明する。マイクロチップ1の流入口106には、抗凝固処理された血液が収容されたリザーバー109血液収容部が倒立して接続されており、リザーバー109にはミネラルオイルを供給する送液ポンプ111が接続されている。送液ポンプ111には図示しない圧力センサーが接続されている。そして、送液ポンプ111から、ミネラルオイルがリザーバー109内に圧入され、血液の上に重層され、血液をマイクロチップ1の流路101内に押し出す。血液は流路101を通過し、血小板易接着面108を有する流路分割部103に到達する。一方、血液サンプル中の不純物は不純物流入防止部105に留まる。流入圧力を送液ポンプ111に接続された圧力センサーによって測定することでより定量的な血小板機能検査が可能となる。また、流路分割部103における血小板の活性化血小板の粘着凝集などやそれに伴うキャピラリーの閉塞をカメラ113で観察することで血小板機能の検査を行うことができる。さらに、血液の流路101の通過時間または通過量を測定することによっても血小板機能検査を行うことができる。カメラ113は画像解析装置115に接続されており、それによって血小板活性化の様子を画像化したりすることができる。内部の血小板活性化を撮影することにより視覚的評価及び圧力上昇による血小板活性化の定量的検査の併用は、患者血液の状態を総合判断する上で非常に重要である。例えば、DIC等の病態において血小板が生体内で既に活性化を受けるとともに血小板が消耗し著しく減少しているケースにおいては、圧力上昇や閉塞時間は遅延される。そのようなケースにおいても、内部をカメラにより撮影することで検査開始直後から血小板易接着表面コラーゲンコート部への血小板の粘着及び凝集の上昇などを確認することができ、患者の血小板の状態を総合的に判断することが可能となる。カメラ113は流路101の血流方向に沿って移動可能なものでもよい。なお、キナクリン等によって血小板を蛍光標識して解析することもでき、その場合、蛍光発色による単位面積あたりの輝度を画像解析で観測することで観測結果を数値化し、データとして取得することが可能である。なお、マイクロチップ1はステージ状のヒーター112の上に設置されており、ヒーター112によって37°Cに加温することでより生体内に近い条件で測定を行うことができる。流路分割部103を通過した血液混合液は、排出口107から排出管114により円滑に排出される。以下に、具体的な実施例を挙げて本発明をより詳細に説明するが、本発明はこれに限定されるものではない。マイクロチップおよび血小板機能検査装置の作成図1Aに示す第1の基板100および図1Bに示す第2の基板110の2枚の透明な基板株式会社リッチェル製射出成型品を用意した。第1の基板100においては、流路101の長さは20mm、深さは40μm、幅は2mmとし、流路分割部103には、長さ15mm、幅40μm、高さ40μmの流路分割壁102を40μmの等間隔で設置し、この部分を流路分割部103とした。さらに、第1の端部より75mmの位置に直径50μmの円柱を100μm間隔で13本設置し、不純物流入防止部105とした。そして、流路分割部103をウェッジ株式会社PS601SW大気中プラズマ照射表面改質装置にて35mmの高さに照射ヘッドを設置し、コンベアを用いて4回プラズマ照射処理及びセン特殊光源株式会社製PL2002N18光表面処理装置によって紫外線ランプより30mmの距離から5分間紫外線照射した。未処理、プラズマ処理後、紫外線照射処理後のそれぞれの櫛領域の平滑性をZygo社製NewView6200非接触表面形状測定機によって解析した結果を表1に示す。PV:014×0105mm中の最大-最小の段差単位nmRa:平均からの高さの解離/測定ポイント数単位nm以上よりプラズマ処理、UV照射処理によって10~200nmのレベルでの表面の粗さが形成されていることがわかる。なお、下記の実験では流路分割部がプラズマ処理されたマイクロチップと、紫外線照射処理、未処理のマイクロチップを用いて行った。第2の基板100においては、流入口106および排出口107となる穴は内径2mm深さ2mmの断面円形の貫通孔とした。また、第2の基板110の、第1の基板100の流路分割部103と重なる位置に075mgmlのコラーゲンタイプI新田ゼラチン製を塗布し真空乾燥して血小板易接着面108とした。第1の基板100の流路101となる溝が開口する面と第2の基板110の血小板易接着面108を有する面を対向させてシランカップリング剤及び60°C3時間の熱圧着により貼り合せ、図1Cに示すマイクロチップ1とした。図2のように、作製したマイクロチップ1を、ステージ状のヒーター11237°Cに加温の上に設置し、マイクロチップ1の流入口106にリザーバー109を接続し、リザーバー109にはチューブを介してポンプ111を接続し、ポンプにかかる圧力を図示しない圧力センサーで測定した。排出口には排出管114を接続し、解析終了後の血液を排出できるようにした。また、マイクロチップ1の流路分割部103の上方には画像解析装置115が接続したカメラ113を設置し、流路分割部103における血小板活性化の様子を観察できるようにした。試験例1、2および比較例1健常人より採血した血液をヒルジン25μgmlによって抗凝固処理した。この抗凝固処理された血液を流路分割部がプラズマ処理されたマイクロチップ試験例1、紫外線照射されたマイクロチップ試験例2及び未処理のマイクロチップ比較例1の流路に流した。具体的には、リザーバー109に抗凝固処理された血液を充填し、ポンプ111にミネラルオイルを充填し、ポンプ111とリザーバー109を接続し、リザーバー109の先端はマイクロチップ1の流入口106に接続した。ポンプ111からミネラルオイルを18μl分の流速でリザーバーに注入して血液の上に重層することで、リザーバー内の血液を同様の流速にてマイクロチップ1に押し出して注入し、図示しない圧力センサーによってミネラルオイルの流入圧力すなわち、血液の流入圧力をそれぞれ3回ずつ測定した。結果をそれぞれ図4A、B及びCに示す。分割流路部分をプラズマ処理図4A、紫外線処理したマイクロチップ図4Bは未処理のマイクロチップ図4Cに比べより安定的な圧力上昇が促され、また圧力パターンのばらつきも少なかった。分割流路部がプラズマ処理及び紫外線照射処理によって血小板凝集塊の接着性が向上していることに起因するものと予測された。試験例3アスピリン100mg服用前後の検体から採血を行い、得られた血液をヒルジン25μgmlによって抗凝固処理した。この抗凝固処理された血液を流路分割部がプラズマ処理されたマイクロチップの流路に流した。具体的には、リザーバー109に抗凝固処理された血液アスピリン100mg服用前後を充填し、ポンプ111にミネラルオイルを充填し、ポンプ111とリザーバー109を接続し、リザーバー109の先端はマイクロチップ1の流入口106に接続した。ポンプ111からミネラルオイルを27μl分及び9μl分の流速でリザーバーに注入して血液の上に重層することで、リザーバー内の血液を同様の流速にてマイクロチップ1に押し出して注入し、図示しない圧力センサーによってミネラルオイルの流入圧力すなわち、血液の流入圧力を測定した。比較例2流路分割部がプラズマ処理されないマイクロチップを用いた以外は試験例3と同様の操作を行い、ミネラルオイルの流入圧力を測定した。試験例3と比較例2の結果をそれぞれ図5および6に示す。流路分割部がプラズマ処理されないマイクロチップを用いた場合は、圧力上昇が不十分でアスピリンの効果がほとんど判別できなかった。これに対し、流路分割部がプラズマ処理されたマイクロチップを用いた場合は、低流速で約50kPa、高流速で約80kPaまで圧力上昇が起こり、アスピリンの効果は十分判別できた。以上より、プラズマ照射により、より高い圧力上昇が起こり高流速の条件下での血小板凝集塊の安定性をより解析することが出来た。抗血小板作用を有するアスピリンは血小板凝集塊の形成速度よりも寧ろ形成された血小板凝集塊の安定性を低下させる効果を有することが分かる。"