"バイオガス中の硫化水素濃度を下げる方法であって、以下の工程、aバイオガスを生成する好冷性嫌気性生物反応器中に空気を供給する工程であって、前記生物反応器がガス相、嫌気性スラッジを含む液体相を含む工程、及びb硫黄元素への酸化によってバイオガスから硫化水素を除去する工程、を含むことを特徴とする方法。バイオガス中の硫化水素濃度を下げる方法であって、以下の工程、aバイオガスを生成する好冷性嫌気性生物反応器中に空気を供給する工程であって、前記生物反応器がガス相、及び嫌気性スラッジを含む液体相を含む工程、並びにb硫化水素から変換された硫黄を前記生物反応器から除去する工程、を含むことを特徴とする方法。前記好冷性生物反応器に結合される少なくとも1つの隣接した生物反応器から、追加のバイオガスが供給される、請求項1又は2に記載の方法。前記好冷性生物反応器に有機基質を供給する工程を更に含む、請求項1~3のいずれか1項に記載の方法。前記有機基質が液体基質、半液体基質又は固体基質である、請求項4に記載の方法。前記有機基質が畜産廃棄物、農業廃棄物、都市廃棄物、農業食品廃棄物、産業有機廃棄物、又はそれらの混合物である、請求項5に記載の方法。前記畜産廃棄物が動物廃棄物である、請求項6に記載の方法。前記動物廃棄物が牛肥料、豚肥料、鶏肥料、又はそれらの混合物である、請求項7に記載の方法。前記好冷性生物反応器が5°C~30°Cの温度である、請求項1~8のいずれか1項に記載の方法。前記バイオガスが空気と混合される、請求項1~9のいずれか1項に記載の方法。前記バイオガス-空気混合物が、前記好冷性生物反応器の前記液体相中に泡立たせられる、請求項10に記載の方法。前記注入空気の流量が、前記バイオガスの流量の2~20である、請求項1~11のいずれか1項に記載の方法。バイオガス中の硫化水素濃度を下げる方法であって、以下の工程、a第一の好冷性生物反応器に空気及びバイオガスを供給する工程であって、前記バイオガスが第二の生物反応器から提供され、前記第一の好冷性生物反応器がスラッジを含む工程、及びb硫黄元素への酸化によって硫化水素をバイオガスから除去する工程、を含むことを特徴とする方法。バイオガス中の硫化水素濃度を下げる方法であって、以下の工程、a第一の好冷性生物反応器に空気及びバイオガスを供給する工程であって、前記バイオガスが第二の生物反応器から提供され、前記第一の好冷性生物反応器がスラッジを含む工程、及びb硫化水素から変換された硫黄を前記第一の生物反応器から除去する工程、を含むことを特徴とする方法。前記第一の好冷性生物反応器がガス相を含む、請求項13又は14に記載の方法。前記第一の好冷性生物反応器が液体相を更に含む、請求項13~15のいずれか1項に記載の方法。前記スラッジが前記第一の生物反応器の液体相又はガス相に含まれる、請求項16に記載の方法。前記第一の好冷性生物反応器に第二の好冷性生物反応器から回収されたスラッジを接種する工程を更に含む、請求項13~17のいずれか1項に記載の方法。前記スラッジが固体又は液体有機基質に順応している、請求項18に記載の方法。前記有機基質が畜産廃棄物、農業廃棄物、都市廃棄物、農業食品廃棄物、産業有機廃棄物、又はそれらの混合物である、請求項19に記載の方法。前記畜産廃棄物が動物廃棄物である、請求項20に記載の方法。前記動物廃棄物が牛肥料、豚肥料、鶏肥料、又はそれらの混合物である、請求項21に記載の方法。前記第一の好冷性生物反応器が5°C~30°Cの温度である、請求項13~22のいずれか1項に記載の方法。前記バイオガスが空気と混合される、請求項13~23のいずれか1項に記載の方法。前記バイオガス-空気混合物が、第一の好冷性生物反応器中に泡立たせられる、請求項24に記載の方法。前記注入空気の流量が、前記第二の生物反応器によって生成されるバイオガスの流量の2~20である、請求項13~25のいずれか1項に記載の方法。本記載に従って、バイオガスを生成する好冷性嫌気性生物反応器中に空気を供給する工程であって、前記生物反応器がガス相及び嫌気性スラッジを含む液体相を含む工程、並びに硫黄元素への酸化によって硫化水素をバイオガスから除去する工程を含む、バイオガス中の硫化水素濃度を下げる方法が提供される。バイオガスを生成する好冷性嫌気性生物反応器中に空気を供給する工程であって、前記生物反応器がガス相、及び嫌気性スラッジを含む液体相を含む工程、並びに硫化水素から変換された硫黄を前記生物反応器から除去する工程を含む、バイオガス中の硫化水素濃度を下げる方法もまた提供される。一態様において、前記好冷性生物反応器に結合される少なくとも1つの隣接した生物反応器から、追加のバイオガスが供給される。別の態様において、本願に記載される方法は、前記好冷性生物反応器に有機基質を供給する工程を更に含む。別の態様において、前記有機基質は、例えば、制限されることなく、畜産廃棄物、農業廃棄物、都市廃棄物、農業食品廃棄物、産業有機廃棄物、又はそれらの混合物のような、液体基質、半液体基質又は固体基質である。前記畜産廃棄物は、制限されることなく、牛肥料、豚肥料、鶏肥料、又はそれらの混合物のような動物廃棄物であり得る。更なる態様において、前記好冷性生物反応器は5°C~30°Cの温度である。別の態様において、前記バイオガスは空気と混合される。更なる態様において、前記バイオガス-空気混合物は、前記好冷性生物反応器の前記液体相中に泡立たせbubbleられる。更なる態様において、注入空気の流量は、バイオガスの流量の2~20である。第一の好冷性生物反応器に空気及びバイオガスを供給する工程であって、前記バイオガスが第二の生物反応器から提供され、前記第一の好冷性生物反応器がスラッジを含む工程、及び硫黄元素への酸化によって硫化水素をバイオガスから除去する工程を含む、バイオガス中の硫化水素濃度を下げる方法もまた、本願で提供される。第一の好冷性生物反応器に空気及びバイオガスを供給する工程であって、前記バイオガスが第二の生物反応器から提供され、前記第一の好冷性生物反応器がスラッジを含む工程、及び硫化水素から変換された硫黄を前記第一の生物反応器から除去する工程を含む、バイオガス中の硫化水素濃度を下げる方法もまた更に提供される。一態様において、前記第一の好冷性生物反応器はガス相を含む。前記第一の好冷性生物反応器は液体相を更に含み得る。別の態様において、前記スラッジは前記第一の生物反応器の液体相又はガス相に含まれる。本願に記載される方法はまた、前記第一の好冷性生物反応器に第二の好冷性生物反応器から回収されたスラッジを接種するinoculate工程を含み得る。別の態様において、前記スラッジは固体又は液体有機基質に順応している。バイオガスから硫化水素を除去するための、無公害、操作が容易、効率的及び費用効率的な生物学的方法が提供される。前記方法は、好冷性生物反応器のガス相又は液体相に少量の空気を注入する工程を含み、微生物叢に硫化水素をバイオガス燃料装置の寿命に影響しない硫黄元素に変換させる。本明細書は、バイオガス中に存在する硫化水素H2Sの濃度を減少するように設計される生物学的方法の性能の評価に関する。嫌気性通性微生物叢に微好気的条件を提供するために、嫌気性スラッジを含む生物反応器の液体又はガス相に空気が供給される。この開示は、エネルギー作物のみでなく農業、農業食品、都市又は産業廃棄物のようないくつかの有機基質に順応する嫌気性好冷性スラッジ≦30°Cに具体的に焦点を当てている。本願に記載される第一の実験の目的は、液体廃棄物を供給されず、生物反応器の底で液体相に注入される既知のH2S負荷1.0~3.3mgH2SL1スラッジh1に曝されるスラッジの生体内変換可能性を評価することであった。液体牛肥料を供給される生物反応器について得られる最大H2S生成率0.19mgH2SL1スラッジh1よりも6.7倍高い能力である、1.27mgH2SL1スラッジh1の最大生体内変換率が得られた。第二の実験は、メタン収率及び運転生物反応器におけるこの方法の影響を評価することを含んだ。二つの好冷性生物反応器はセミバッチモードで操作され、同じ方法で液体牛肥料を供給された。二つの生物反応器の一つのみが、微好気性条件下で操作された。この生物反応器は、空気/バイオガス体積比が0.056未満であった日を除いて、検知できないH2S濃度を有した。0~3500ppmの範囲の濃度が、空気注入なしの生物反応器のガス廃物において測定された。微好気性条件下で操作される生物反応器は対照生物反応器よりも6.5低い特定のメタン収率を有したが、この違いは実験の最後の4サイクルでは0.87に落ちた。このことは、4mL/minまで下がった、その期間の空気流量の減少によって説明され得る。別の実験は、微好気性条件に曝されたときにH2SをS0に生体内変換する、好冷性ADスラッジの可能性を評価することを含んだ。硫黄質量バランスbalanceのみでなくガス体積バランスに対するこの基質の寄与を排除するため、スラッジは液体肥料と共には供給されなかった。これらの供給されないスラッジの残りのバイオガス産物は別のタンクにおいて別個に測定され、対照となった。図1は、実験生物反応器から成る実験装置を図示する。それぞれの参照番号は、以下に言及する。20合成バイオガス、22質量流量計、24拡散器、26空気注入ポンプ、28質量流量計、30ガス試料採取、32容積ガスメーター。40L生物反応器を恒温室25°Cに置き、好冷性AD生物反応器からの15Lのスラッジを接種した。カナダ農務農産食品省の研究室lennoxville、Quebecから来たこれらのスラッジは、液体豚肥料に順応し、バッチモードで操作されたetal2000CanadianAgriculturalEngineering42131137。標準化農業バイオガス空気液体混合物-70.9CH4-28.7CO2-0.385H2Sは、穿孔ゴムチューブEliteL89cmdia05cmから作られる水槽拡散器を用いて、生物反応器の底で泡立たせられる。このバイオガスの標準体積流量0~100mL/minは、このガス混合物を受け取った業者によって具体的に校正された質量流量計/調節器DwyerGFC17正確度15によって保証された。圧力調整器に結合した蠕動ポンプを用いて空気をガス相に注入した。第二の質量流量計/調節器FMA2617正確度02を使用して、空気の標準体積流を0~50mL/minに調節した。ガス相を、Carle400AGCガスクロマトグラフGCCH4、CO2、N2及びH2Sによって週に3~5回分析した。比色管を用いてより低いH2S濃度を測定したキタガワモデル8014120SM範囲502000ppm。O2濃度をクリティカルエンバイロメント電気化学センサーMACEOO2範囲025正確度04を用いて測定した。液体相の総硫黄濃度をLECO分析器モデルSC444DRLaboratoiresd’analysesSMIncVarennesQCCanadaを用いて実験の最初及び最後に測定した。これは、生物反応器から、次に混合及び試料採取される液体相を抽出することを含んだ。液体の表面の固体及び生物反応器のガス相の壁に付着する固体を実験の最後に回収し、総硫黄に関して分析した。総固体TS及びpHを、既知の標準方法APHA1992に従って測定した。図3は、実験の間の、生物反応器の投入と排出の間の総体積流量の減少率を示す。結果は、4.6の平均減少で、操作の最後25日間に0~15の体積流量の低下を示す。このパラメータを用いて観察される可変性のため、いかなる確実な結論も引き出され得ず、これらの観測を操作条件と関連付けるのは困難であった。排出量測定の妥当性についての疑念もあり、測定機器自体の正確度についての疑問が引き起こされた。そのため、投入で測定される流量熱質量流量を用いて排出での体積を見積もることを決めた。この体積流量を用いて、以下に議論されるH2S変換率を見積もった。図3は、排出での流量の見積もりに基づく体積減少率のシミュレーションも示している。このシミュレーションに関して、バイオガスの加湿は、注入されるバイオガスの体積を3.3増加するとまずは考えられ、バイオガスは液体相におけるバブリングの後で飽和するであろうと仮定した。更に、投入体積と比較してそれぞれ0.4及び0.2までの減少を示すH2Sの変換及びO2の消費を考慮するために、体積の減少が含まれた。図4は、この実験に用いられる、残余の一日のスラッジのバイオガス産物を示し、これもシミュレーションに組み込まれた。このバイオガス産物を別個のタンクにおいて測定した。合計で、60日の実験の間に、35日分のガス廃物試料をGCによって分析した。図5は、CH4及びCO2についてのこれらの分析の結果を示し、生物反応器に注入される標準混合物についての2.47±0.014試料と比較して、2.56±0.01の平均CH4/CO2比を与える。このより高いCH4濃度は、CO2及び水素を使ってメタンを生成する水素化メタン生成細菌の作用によって説明され得る。この水素はスラッジに存在する残余の固体の加水分解に由来すると考えられる。実験の初めの15日について、平均CH4/CO2比は2.66±0.01であった。このわずかに高い比もまた、スラッジの最大の加水分解作用の期間と一致した図4参照。いずれにしても、この現象は体積バランスに影響しない。図6は、空気の理論的O2/N2比をガス相分析結果と比較するのに用いられ得る。傾向曲線の傾きは、無視し得ると考えられる差である、空気のそれ0.266よりも1.1低いO2/N2比を示す。しかしながら、値の不一致は、測定装置の不十分な正確度の結果であると考えられ、このことは、消費される酸素の量を正確に見積もることを不可能にする。実際、測定される窒素濃度平均13.2はGCの校正に使用される標準1N2よりも高い。しかしながら、化学量論的に、分解されるH2Sの1mL毎に0.5mLのO2が必要とされる。これは、この実験の間に得られる最高の変換率についての投入で注入される総体積の0.1に相当する。従って、酸素消費はガス体積バランスにおいて無視し得ると考えられる。図7は、空気/バイオガス比に加えて、適用される負荷の関数としてのH2S変換率を示す。最高変換率は38日目に得られ、1.27mgH2SL1スラッジh1に相当する0.318mgH2Smin1であった。これは適用される負荷1.31mgH2SL1h1の97.2変換を表す。この変換率は、液体牛肥料を供給された生物反応器で観察される率、すなわち0.19mgH2SL1スラッジh1より6.7倍高い。操作の3日目まで、0.78mgH2SL1スラッジh191変換を有する4.1倍のこの変換率が得られた。有機物がほとんど得られないため、操作生物反応器の場合のように、酸素が通性好気性プロセスに使用されないため、この高収率が得られる。従って、酸素はH2Sの酸化に特に利用可能である。更に、空気注入ポンプの偶然の停止は0.028mgH2Smin1への変換率の低下を引き起こしたため、プロセスが好気的であることが20及び21日目において確認された。36日目から、0.15~0.20の空気/バイオガス比を維持しながら、負荷を徐々に増やした。H2S負荷を継続的に増加しているにもかかわらず、変換率は38日目に横ばいになった。条件が維持されたにもかかわらず、43日目~49日目に変換率は25落ちた。図8は負荷の関数としての廃液中のH2Sの減少率を示す。41日目から、効率が許容できないレベルへ急速に落ちるのがわかる。実際、41日目~50日目に、廃液中のH2S濃度は400から1300ppmへ上がった。実験の始めから、固体堆積物が、液体の表面、特に生物反応器の壁に形成された。生物反応器の壁では、最大の蓄積が液体の約2cm上の高さに現われた。更に、黄色がかった粉末がガス相の全ての壁に存在した。合計で、高濃度の固体を含む39TS32gの灰色がかった堆積物が回収された。全体の硫黄分析は、この堆積物は1.59gの硫黄、すなわち実験の過程にわたって生物反応器に蓄積された硫黄12.49gSの15.6を示した。表1は、表面で回収される上記の固体堆積物を除く、液体相において回収された固体のバランスを示す。これらの結果は、実験の始め及び終わりに得られる二つの試料に基づく。固体の硫黄濃度は増加するが、始めと終わりのバランスはそれにもかかわらず負であることが観察された。これは予想に反した。固体含有量の減少は、加水分解プロセスの継続によって説明され得るが、このことは負の硫黄バランスを説明しない。最ももっともらしい仮説は、試料採取方法が固体の損失を引き起こすことである。表1回収された固体のバランスしかしながら、液体相におけるpHの低下を引き起こすので、液体相における硫酸塩の蓄積は起こりそうもない。これに反して、このパラメータは実験の初めでの7.81から実験の終わりでの7.92へ増加した。これは、制限された酸素条件は、硫酸塩よりもむしろS0の形成を促進するという仮説に一致する。別の実験は、連続バッチ反応器においてH2Sを生体内変換する、好冷性ADスラッジの可能性の評価を含んだ。図2は、その内容が参照により本願に含まれるカナダ特許第2138091号に記載されるような実験室規模の連続バッチ反応器SBRから成る実験装置を図示する。それぞれの参照番号は、以下、1.生物反応器、2.スラッジ床ゾーン、3.処理廃液、4.ガススペース、5.バイオガス再循環ライン、6.バイオガスポンプ、7.供給ライン、8.処理廃液除去ポート、9.スラッジ試料採取ポート、10.混合液又は上清試料採取ポート、11.ガス排気口、12.バイオガス流量計、13.熱電対、及び14.供給システム、に言及する。図9は、空気注入の開始の前後2009年6月15日を参照での二つの生物反応器についての具体的なCH4収率曲線を示す。この実験とは独立の理由で、この日前の消化周期について、負荷量を33まで増加した。更に、2009年6月15日から、生物反応器に供給される液体肥料混合物のレベルに変化があった。操作条件の変化に続いて、二つの生物反応器で具体的なCH4収率の20低下が観察された。空気注入期間10消化周期=70日に、平均収率は、対照の生物反応器BR30については0.120LCH4g1COD及び微好気性条件下の生物反応器BR31については0.112LCH4g1CODであった。従って、BR31の収率はBR30よりも6.7低かった。従って、空気の注入は具体的なCH4収率を減少させた。しかしながら、最後の4周期では、生物反応器収率の差は狭まり、この期間については、BR30の収率はBR31よりも0.87高いという結果であった。この差は非常に小さく、有意であるとは考えられない。実際、2009年6月15日の前は、BR30の収率はBR31よりも平均して2.9低かった。実験の最後の4周期についての差の平均の減少は、空気流量の減少によって説明され得た図8参照。表2は、空気注入期間の間の、生物反応器の主な性能パラメータを示す。TS、揮発性固体VS及び総化学的酸素要求量TCODの減少率の点で、生物反応器間に有意な差はなかった。廃液中に測定される揮発性脂肪酸についても同じである。表2は、酢酸及びプロピオン酸についての結果のみを示す。これらの酸の蓄積は、微生物叢の不均衡によって通常は引き起こされるであろう。表2生物反応器のパラメータ図10は、実験を通してのH2S濃度のGC分析を示す。結果を比較可能にするために、窒素なしで表され得るように濃度を補正した。実際、ADプロセスは窒素を産生せず、更に、ガス廃物中に見出される量は周期の過程にわたって変化し、測定されるH2S濃度に影響する。H2S濃度の全般的な減少が2009年6月15日の後に観察され、おそらくはこの日の液体肥料の変化に起因し得る。従って、BR30の平均H2S濃度は、このグラフで示される空気注入の前の期間の±3527ppmからその後の±1435ppmに減少した。にもかかわらず、空気注入の開始後、二つの生物反応器の間に著しい差が観察された。より具体的には、BR30は検出不能な濃度<300ppmから3958ppmH2Sまでを有し、BR31の場合における分析の75に対して、これら50の分析の20が検出不能な濃度を有した。比色管分析は、BR30の一回のみに対して、BR31では21回検出不能な濃度<50ppmを確認した。更に、BR31でH2Sが検出された10の分析のうち8が、周期の同じ日、すなわち4日目に起こった。これは、バイオガス産物が最高21~35LCH4d1の日であった。そのため、これらの日は空気投与量が不十分であったと仮定され得、バイオガス産物レベルの関数としてリアルタイムでポンプが制御されなかったと考える。H2Sが低窒素濃度<4.3でのみ検出されたので、図11はこの仮説を支持する。グラフで特定される二つの値は、試料が採取されるすぐ前に液体相が誤って攪拌された日を表す。この攪拌は、液体相に溶解するH2Sの一時的な放出を引き起こした。図12は、BR30のみ嫌気性について、空気注入期間のそれぞれの周期の最大H2S負荷を示す。0.19mgH2SL1h1に相当する、0.064mgmin1までの負荷が観察された。この日のBR31のガス廃物中に検出可能なH2Sはなく<50ppm又は0.0025、空気/バイオガス比は0.19であった。低温で作動し、液体牛肥料を供給されるAD生物反応器のガス相への空気の注入は、バイオガスH2S濃度を50ppm未満のレベルに下げることが、本願で示される。5~6の最小空気濃度を維持するために、バイオガス産物の関数として空気投与を制御することが好ましいことがわかる。これはバッチ操作に特に当てはまる。その結果、バイオガス希釈を最小化し、一方でシステム性能を完全に嫌気性条件下と同じレベルに維持する。ガス相における酸素の存在は、具体的なメタン収率に有意に影響せず、最後の4消化周期では対照反応器と1未満の差を有した。システム安定性は、微好気性条件によって損なわれなかった。しかしながら、基質を供給されない好冷性ADスラッジは、液体肥料を供給される生物反応器と比較してより高いH2S変換能力を提供する。スラッジへの人工バイオガスのバブリングは、97.2の変換率で、廃液から1.27mgH2Sh1L1まで除去するのに効果的であった。これは液体牛肥料を供給された生物反応器において観察された最大H2S生産率0.19mgH2Sh1L1よりも6.7倍高い変換能力である。硫黄の一部15.6は、ガス相生物反応器の壁のみならず液体の表面からも回収された。上記の実験モンタージュを実際の農場の事情について検証するために、カナダのStEdwidgedeCliftonの村の農場に、2011年2月に試作機を設置した。この場所で得られた結果は、実験室で観察された結果を超える性能を示した。最適化分析は、農場で運転中の肥料消化系から汲み上げられる農場のメタニセーションmethanisationスラッジを接種される、二つの異なる構造のバブルカラムにおいて実施された図13及び14参照。図13は、バブルカラム100、110装置を図示する。それぞれの参照番号は、以下、100.バブルカラムBF1、110.バブルカラムBF2、112.EPDM拡散器の直径25.4cm、114.バブルカラムBF1及びBF2の直径60.96cm、116.拡散カラムの直径30.48cm、118.バブルカラムBF1及びBF2の高さ152.4cm、120.BF1内のスラッジの高さ86,36cm、122.BF1内の3つの拡散器のセットアップ、124.BF2内のスラッジの高さ121.92cm、126.BF2内に設置されたEDPM拡散器、128.BF2のヘッドスペース30.48cm、130.BF2内の拡散カラムの高さ114cm、132.BF2の底と拡散カラムの間の間隙15.24cm、160.排水弁、162.排水弁、に言及する。図14は、試作機構造のプロセスフローチャートを図示する。それぞれの参照番号は、以下、134.化学的前処理、136.試料採取ポート1H2S<2000ppmの場合、バイオガスを注入、138.ロタメータ、140.熱質量流量制御装置空気-BF1、142.熱質量流量制御装置空気-BF2、144.試料採取ポート3BF1の排気口、146.試料採取ポート4BF2の排気口、148.質量流量計-BF1、150.質量流量計-BF2、に言及する。空気をバイオガスに加え比5:100、混合物を液体スラッジ約3固体中に泡立たせた。いかなる産物もスラッジに加えなかった。バイオガス中の酸素濃度は約1であった。微好気性条件は、電子受容体としての酸素を用いて、硫化水素H2Sを元素硫黄S0に変換する生物化学反応を促進する。チオバチルス属に含まれる通性好気性微生物は、嫌気性スラッジ中に通常存在する。数週間の操作の後、硫黄飽和スラッジは、メタニセーション系廃液タンクに放出される。生物学的起源の固体元素硫黄は、この廃液の肥料潜在性fertilizingpotential、高品質肥料に寄与する。バブルカラム2110は、H2Sの変換率及びH2S濃度減少の点で最高の性能を示した。測定された最高の変換率は、2.4mgH2S/L/h、94の減少であった。更に、このカラム110の性能は、バブルカラムの注入口136で高濃度のH2Sが試験されるときよりもさらに良かった。カラム1100は注入口136での高濃度4000~5000ppmに関して、より低い性能排気口で>2000ppmを示した。メタン濃度は、バブルカラムの変化によって有意には影響されなかった。測定は、空気によるバイオガスの希釈から期待されるものと一致した。カラムが最も重要な変換率性能に達したとき、酸素濃度は出口で減少した。カラム2110がH2Sの最高の変換率に達したとき、0.8の濃度が測定された。化学量論式で計算される酸素消費量は、生体内変換されると想定される硫黄の量に一致した。接種材料は、いかなる性能の低下も示さずに、48日の期間にわたって使用された。従って、本開示は、本願に記載される、バイオガスから硫化水素を除去するための、無公害、操作が容易、効率的及び経済効率的な生物学的方法が、農場の生物反応器装置で適用できることの証明を、明らかに提供する。本開示は、その範囲を制限するのではなく、態様を説明するために提供される以下の実施例を参照することにより、より容易に理解される。実施例1液体牛肥料を供給されるAD生物反応器実験は、液体牛肥料を供給されるAD生物反応器のガス相への空気の注入が、バイオガスH2S濃度を減少することを確かめることを含んだ。実験はまた、O2が微生物学的バランスに影響するか、又は生物反応器の性能を低下させるかどうかを検証することを可能にした。それぞれが20Lのスラッジを含み、セミバッチモードで液体牛肥料を3.36~4.05gCODL1スラッジd1の範囲の有機負荷量で供給される、2つの40L生物反応器を、以下の順序に従って操作した。1日目:上清の排出及び1への供給。2、3及び4日目:2、3及び4への供給。5、6及び7日目:反応時間及び検出時間。生物反応器は、実験の開始前9ヶ月間運転状態にあり、同一の収率を有した。本実験では、生物反応器31BR31のみを微好気性条件に曝し、4.0~6.3mL/minの空気流量を生物反応器のガス相に注入した。生物反応器30BR30は同じ条件下で操作され、正確に同じ基質を同じ負荷量で供給されたが、ガス相にいかなる空気注入も受けなかった。そのため、BR30はこの実験の対照として役割を果たした。ガス相を一週間に3~5回、カール400AGCガスクロマトグラフCH4、CO2、N2及びH2Sで分析した。比色管を使用してより低いH2S濃度を測定したキタガワ、モデル8014-120SM、範囲:50~2000ppm。TS及び揮発性固体VSを、標準方法APHA1992に従って測定した。O2濃度を、クリティカルエンバイロメント電気化学的プローブMAC-EOO2、範囲:0~25、正確度:0.4で測定した。総化学的O2要求量TCODを、廃液に加えて供給される基質についても測定した。生成されるガスの体積を、毎週校正される容積式流量計を用いて、毎日測定した。実施例2試験的AD生物反応器ユニット実験二つのバブルカラムBF1、100:及びBF2、110図13は並行して操作され、試験機の核となった図14。これらは、それぞれ450Lの水圧容量高さ:1.52m、118;幅:0.61m、114を有する2つの同一の円筒型タンクである。壁はステンレス鋼製であり、取り外し可能なプレキシガラスカバーを有する。ネジポートは、外側のチューブ連結に利用できる。内部ネジポートは、バブルカラムのより低い部分での拡散器の取り付けを可能にする。排出バルブ5.08cmはリザーバの円錐底の最も低い点で利用可能であり、完全にリザーバを空にすることを可能にする160、162。バイオガス管は透明な補強された柔軟なPVC及び堅いネジPVC主に直径1.27cmで作られている。ガス漏れ総合点検を、石鹸及び水を用いて定期的にシステムにおいて実施した。バブルカラム1BF1、100に255Lの液体スラッジを接種する。直径25.4cmの3つの拡散器122を、BF1column100の底に設置する。バブルカラム2BF2、110を、バブルカラム1100に関して記載されたものと同一の1つの拡散器126を有する同軸内管直径:30.48cm、116に備える。拡散器126を内管の底から5cmに設置する。液面は管の上部よりも5cm低い。この構造は、カラム1100と比較してより低い直径/高さ比を有する。バブルカラム2、110は、全体的に361Lのスラッジを含む。変換率を計算するのに使用されるスラッジの体積は、内管の内側の液体及び拡散器の下の液体のみを考慮すれば、125Lである。内管の周りの液体は、流れず、生物学的プロセスに加わらないと考えられる。農場で消化槽によって生産されるバイオガスの画分は、その通常の使用から転用され、それぞれのバブルカラム100、110容量型ポンプ:ADI、モデルR181-FT-EA1;0.9m35psiの底の拡散器122、126へ送り込まれる図14参照。バイオガス脱硫のための化学的前処理134スルファトリート410HPを使用して、バブルカラム注入口でH2S濃度を調節した。これは性能評価に役立ち、使用されるガス分析器の最大測定範囲より低く濃度を保つ。ニードル弁の手動調整は、バイオガスが化学的前処理134を完全に又は部分的に迂回することを可能にする。2つのバブルカラム100、110を同時に同じH2Sの濃度に曝した。バイオガスがバブルカラム100、110に達する前に、空気をバイオガスラインに注入する蠕動ポンプ:ColeParmer、モデルRK-74207-00;0~40L/h。空気流を測定し、二つの熱質量流量制御装置140、142Aalborg、モデル-GFC17A-VDADL2-BAO;0~20L/hを用いてそれぞれのバブルカラム100、110で独立に調節した。空気/バイオガス混合流をバブルカラムの注入口138でロタメータDwyer、モデルDR204282;0~450L/hを用いて測定し、手動で調節した。排出口144、146での総流量を測定し、質量流量計148、150Aalborg、モデルGFM17A-VDADL2-BAO;0~300L/hを用いてリアルタイムで記録した。化学フィルタと一体となった乾燥フィルタを、流量計148、150の上流に設置し、装置を腐食から保護する。二つの質量流量計148、150を、アッセーessayの間に観察されたもの65CH4、30CO2、5空気に近いガス組成物を用いて工場校正factorycalibrateした。注入口で注入される空気流及び排出口での空気/バイオガス流を、1分に一回記録するモデルHOBOU12-006。生物反応器の底にあるパイプから汲み上げることによって、スラッジを消化サイクルの最後に回収した。バブルカラムに接種する前に、スラッジを2回濃縮した。スラッジを24時間沈降させ、次に、総量の半分を液体カラムの中間の高さにあるバルブを通してフラッシュした。一回目の上清の排出の後、リザーバを再び満たし、その後に沈降及びフラッシィング工程をもう一度繰り返す。濃縮スラッジをバブルカラム100、110に送り込み、1の日からバイオガスを拡散器122、126に供給し始める。バイオガス組成物は、毎日のモニタリングの過程の間、一時間に少なくとも一回、技術者によって測定された注入口136、及び排出口144、146。以下の主な特徴を有する、マルチ-ガス分析器を使用するSewerinMultitec540。メタンCH4、赤外線センサー、範囲0~100体積、誤差1.5体積。二酸化炭素CO2、赤外線センサー、範囲0~100体積、測定誤差/-1.5体積。酸素O2、電気化学的センサー、範囲0~25、誤差/-3体積。硫化水素H2S、電気化学的センサー、範囲0~2000ppm、>1000ppmの場合は誤差/-100ppm及び<1000ppmの場合は誤差/-6ppm。比色管を定期的に使用して、分析器の測定を確認したキタガワ、モデル94-120SM、範囲0.5~1.2及びモデル94-120SF、範囲50~2000ppm。カナダのシェルブルックのカナダ農務農産食品省の研究室で運転中のガスクロマトグラフGCを用いて他の比較抽出検査をした。pH及びスラッジ温度を、スラッジ試料を用いて定期的に手動で測定したOakonpHTestr30。室温を観測し、調節した。生体内変換プロセスの性能を、以下のプロセスパラメータに従って評価した。1H2S排出口濃度:燃料としての使用に関してバイオガス腐食性のレベルを確立する。燃焼前のバイオガス中のH2S濃度は、近い将来にケベック州において州の規則に制約されるであろう。2H2S濃度の減少率:H2S濃度減少に関して注入口濃度と相対的に性能の指標を与える。空気添加は排出口でガスを希釈し、以下のように計算されるこのパラメータに影響を与える。3H2Sの変換率:実験されるスラッジの体積、泡立たせられるガス流及び注入口と排出口との間のバイオガス濃度差に関して性能の指標を与える。以下のように計算される。結果を集計し、手動の測定から計算した。この農場で生産されるバイオガスは、消化サイクルを通じてH2S濃度の有意な変化を示す2000~5000ppm。技術者は、化学的前処理134をわずかに再調製して、注入口136、138でH2S濃度を安定させた。システムが定常状態にあるとみなされるとき、以下に示されるそれぞれの一日の性能は、その日の終わりの結果3~4測定の平均であった。表3BF1において記録された結果日1はスラッジを通したバイオガスバブリングの開始日を表す。表4BF2における記録された結果結果なし:H2Sについての分析器の範囲外>2000ppm。表5及び図15はバブルカラム1100の性能を示す。カラムに供給されるバイオガスの流量が日14~21の間に減少し、許容可能な排出口のH2S濃度を得た<300ppm。日21~28の間、操作パラメータは変えられず、変換率は1.62mgH2S/L/hの平均、88の減少であった。日35、41及び42の変換率の低下は、注入口136での濃度が1000ppmまで下げられた事実のためであった。表5BF1で記録された性能結果が得られない。表6及び図16はバブルカラム2110の性能を示す。カラム110に供給されるバイオガスの流量が日14~19の間に減少し、排出口146で許容可能なH2S濃度を得た<300ppm。日20~28の間、操作パラメータは変えられず、平均変換率は0.98mgH2S/L/h、95の平均の減少であった。日35、41及び42の変換率の低下0.48mgH2S/L/hの平均は、主に注入口136の濃度が1000ppmまで下げられた事実のためである。日44及び48の間に投入に適用される高濃度4000~5000ppmは、2.15mgH2S/L/hの平均、93のH2Sの減少率を有し、変換率の点で最高の性能を提供した。その期間日44~48、排出口146での酸素濃度は0.9から0.8に減少した表4。日48へ化学量論式を使用すると、生体内変換されると仮定される硫黄の質量を酸化するのに、0.084L/hの酸素が必要とされた。これは、その日に供給された酸素の10を示す。排出口146での酸素の減少は、H2Sの高変換率のためであった。表6BF2で記録された性能明細書はその特定の態様に関連して記載されるが、更なる変更が可能であること、及び本出願は、一般に発明の原理に付随し、本発明に関係がある分野において公知の又は慣例の方法に由来するような、及び前述の本質的な特徴に適用されるであろうような、及び添付される特許請求の範囲に付随するような本発明からの逸脱を含む、発明のあらゆる変化、使用、又は適応に及ぶことが意図されていることが理解されるであろう。"