"スクロースからの乳酸の生成が陽性であることを特徴とする有胞子性乳酸菌バチラスコアギュランスBacilluscoagulansF6-2株。請求項1記載の有胞子性乳酸菌バチラスコアギュランスBacilluscoagulansF6-2株をスクロース、酵母エキスを含有する培地で増殖させることを特徴とするL-乳酸の製造方法請求項1記載の有胞子性乳酸菌バチラスコアギュランスBacilluscoagulansF6-2株を用いて培地温度40-70°C、pH5~8に保ちながら乳酸発酵するL-乳酸製造方法。請求項1記載の有胞子性乳酸菌バチラスコアギュランスBacilluscoagulansF6-2株を含有することを特徴とする食品。請求項1記載の有胞子性乳酸菌バチラスコアギュランスBacilluscoagulansF6-2株を含有することを特徴とする医薬品。以上の技術背景を考慮し、発明者らは無滅菌スクロース培地において、高速かつ安定した乳酸発酵を行うため、バチラスコアギュランスBacilluscoagulansのスクリーニングを行い、ついに耐熱性の高い新規菌株バチラスコアギュランスBacilluscoagulansF6-2株を完成するに至った。又、該菌株を使った光学純度の高く生産速度の大きいL-乳酸の製造方法を完成した。さらに、該乳酸菌を使用した食品或いは医薬品を開発するに至った。以下にその説明をする。本発明の1は、スクロースからの乳酸の生成が陽性であることを特徴とする有胞子性乳酸菌バチラスコアギュランスBacilluscoagulansF6-2株であることを特徴とすることもできる。本発明の2は、本発明の1記載の有胞子性乳酸菌バチラスコアギュランスBacilluscoagulansF6-2株をスクロース、酵母エキスを含有する培地で増殖させるL-乳酸の製造方法であることを特徴とすることもできる。本発明の3は、本発明の1記載の有胞子性乳酸菌バチラスコアギュランスBacilluscoagulansF6-2株を用いて培地温度40-70°C、pH5~8に保ちながら乳酸発酵するL-乳酸製造方法であることを特徴とすることもできる。本発明の4は、本発明の1記載の有胞子性乳酸菌バチラスコアギュランスBacilluscoagulansF6-2株を含有する食品を特徴とすることもできる。本発明の5は、本発明の1に記載の有胞子性乳酸菌バチラスコアギュランスBacilluscoagulansF6-2株を含有する医薬品を特徴とすることができる。本発明の新規有胞子性乳酸菌バチラスコアギュランスBacilluscoagulansF6-2株は、糖質源としてスクロース、酵母エキスを含有する培地において、温度40-70°CおよびpH5~8に保つことで乳酸発酵ができるものである。したがって、従来のデンプン等の糖質源をアミラーゼ酵素で糖化処理していた工程あるいはスクロースをスクラーゼ酵素でグルコース、フルクトースに分解していた工程を省くことができる。また、発酵速度単位体積時間あたりの乳酸生成量は極めて速く、従来使用する酵母エキス量と同量で、2倍以上発酵速度が得られるため、能率の良い乳酸発酵が可能であり、乳酸発酵時間およびコストを大幅に低下させることができる。本発明の1の乳酸菌バチラスコアギュランスBacilluscoagulansF6-2株は、次に示す菌学的性質を有する。1菌の形態直径の大きさ:0.8~0.9μm細胞の形状:桿状運動性:なし芽胞形成:あり2菌の生理学的性質酸素:好気性、通性嫌気性、嫌気性でも生育グラム染色:不定グルコース:陽性フルクトース:陽性スクロース:陽性マンノース:陽性メリビオース:陽性マルトース:陽性上記乳酸菌バチラスコアギュランスBacilluscoagulansF6-2株は独立行政法人製品評価技術基盤機構特許微生物奇託センターに平成22年12月20日付けでNITEP-1022として寄託されている。以下、図表を用い実施例に基づいて本発明の乳酸菌、L-乳酸製造方法を詳細に説明する。準備した発酵培地を攪拌装置付きの発酵槽に入れる。その後、同様の培地で、発酵培地の1の容量で予め24h発酵を行った植菌用乳酸発酵液を植菌する。発酵中は攪拌棒を50rpmに保ち、攪拌を行う。発酵培地には表3に示した組成の培地を使用した。本発明1の乳酸菌が増殖し、発酵が進むと次第に低下するpHを6.0に保つために、28アンモニア水をポンプで逐次滴下する。発酵槽温度は53°Cに保った。発酵終了後に発酵液をHPLCで分析し乳酸量を決定した。表4はバチラスコアギュランスBacilluscoagulansF6-2株による乳酸発酵結果である。酵母エキス10g/Lにおいて、平均乳酸生成速度は7.66g/L/hに達した。最大発酵速度は酵母エキス12.5g/Lにおいて16.9g/L/hに達した。酵母エキス15gでは発酵時間は11.9時間で終了しており、バチラスコアギュランスF6-2は極めて高速な乳酸発酵を行うことが判明した。これらの乳酸生産速度は上述した従来の文献非特許文献3、4のチャンピオンデータよりもはるかに大きいことがわかる。比較例のため、バチラスコアギュランスBacilluscoagulansNBRC12583、バチラスコアギュランスBacilluscoagulansSIM-7DSM14043を使って同様に発酵を行った。培地は表3のものを使用し、酵母エキスは5g/Lとした。培地pHは6.0に保持し、発酵槽温度は53°Cとした。結果を表5に示す。表5からわかるように、比較例ではスクロース培地で乳酸発酵試験を行ったが、バチラスコアギュランスSIM7DSM14043およびバチラスコアギュランスNBRC12583ともに、スクロース培地では極めて発酵速度が本発明に比べて1/100~1/10と遅いことが判明した。非特許文献5においてはバチラスコアギュランスSIM-7DSM14043株をグルコース培地127g/Lにおいて、酵母エキス7.5g/Lで乳酸発酵を行っている。この場合、平均乳酸発酵速度は2.8g/L/hであり、本発明の乳酸生産速度に比べて格段に遅いことがわかる。最適な乳酸発酵温度を調べる目的で、表3の発酵培地酵母エキス5g/Lにおいて、発酵温度を変化させた。発酵実験は全て24hで強制的に終了させ、HPLCによる乳酸分析を行った。培地pHは6.0に保ちながら乳酸発酵を行った。図1は発酵培地を有機酸分析HPLCで分析し、生成乳酸量を調べ、発酵温度との関係を示したものである。図に示されるように温度53°Cで最も乳酸生産性が良いことが判明した。即ち、本発明のバチラスコアギュランスBacilluscoagulansF6-2株による乳酸発酵においては53°Cという高温でも十分に大きい乳酸発酵速度を有する。特にこうした高温で発酵を行うと他の細菌の感染増殖を抑えることができ、発酵後の滅菌が必要なくなり工業的に大きなメリットである。発酵温度53°Cにおける最適な乳酸発酵pHを調べる目的で、表3の発酵培地酵母エキスは5g/Lにおいて、発酵培地pHを変化させ、乳酸発酵実験を行った。乳酸発酵実験は全て24hで強制終了し、HPLCによる乳酸分析を行った。図2に実験結果を示す。図に示されるように、pH6.0において乳酸生産性が最も高いことが判明した。実施例4における発酵乳酸2Lをロータリーエバポレーターで110°C、80torrに保ちつつ15まで濃縮した。その後、乳酸モル量の0.5モルに相当する濃硫酸を加え、乳酸アンモニウムからアンモニウムイオンを遊離させ、硫安を塩析させた。硫安は遠心分離機を用いて、2340G、10分で固液分離した。液体分はジムロート冷却管付きの三口フラスコに投入した。ジムロート冷却管は液体窒素トラップを介して真空コントローラー付き真空ポンプに繋げた。フラスコはオイルバスで120°Cから200°Cに2hかけて段階的に加熱し、真空度を500torrから10torrまで低下させ、縮合した。その後、オクチル酸スズを0.3加え、さらに200°C、10torr、2h縮合した後、ジムロート管を外し、ジムロート管の代わりに、留去用フラスコを取り付け、再び200°C、10torrで減圧した。三つ口フラスコ内で還流しているラクチドを留去用フラスコに3時間かけて留去した。この時、ラクチドの歩留りは乳酸からの理論歩留りに対して82であった。このラクチドを光学異性体分離カラムCP-Cycrodextrin-β-2,3,6-M-19を備えたガスクロマト分析システム島津GC-2010にて分析を行ったところ、乳酸の光学純度はL-乳酸98.4であった。したがってバチラスコアギュランスBacilluscoagulansF6-2を使用することで、光学純度の高いL-乳酸発酵の製造が可能であることが判明した。実施例4における固形分離した菌体を純水で洗浄、濾別した後、温風乾燥機内で60°C、135分間乾燥した。さらに真空デシケーターで10torr、24h常温乾燥した。菌体A実施例4における固形分離した固形分を純水で洗浄、濾別した後、温風乾燥機内で60°C、180分乾燥した。さらに、電気炉50°Cで48h乾燥した。菌体B試験管内に純水10mlおよび0.52gMRSを含む液体培地に上記で回収した菌体をそれぞれ植菌し50°Cの恒温槽内に保持した。発酵実験後、菌体Aは6時間で発酵が確認できた。菌体Bは全く発酵しなかった。実施例1におけるバチラスコアギュランスBacilluscoagulansF6-2を人工胃液9ml0.2NaCl、0.35ペプシン1:5000、1MHClでpH2.0およびpH3.0に調整に1ml菌体乾燥重量0.005g0.005添加し、37°C、1、2、3、4時間ずつ処理した。その後、各処理液を10の7乗および8乗に希釈した。その希釈液からスパチュラで表3に示した組成の寒天培地に植菌して50°Cで培養した。24時間後にコロニー数をカウントし、生菌数を推定した。その結果を図3に示す。図3からわかるように、本菌体はpH2および3において菌数の減少が少なく、胃酸に耐えうる菌であることが判明した。"