"メトキシエチルアクリレートaの重合体Aと、水膨潤性粘土鉱物及びシリカから選択される1種以上の無機材料Cとを含有する細胞培養基材の上に、血液由来単核細胞群を播種し、成長因子を使用せずに血液由来単核細胞群中の接着性細胞のみを選択的に細胞培養基材上で接着増殖させ、培地交換により、培養基材表面に接着していない細胞を除き、次いで細胞培養基材の表面に接着し増殖された接着性細胞を基材から剥離することを特徴とする血液由来単核細胞群からの接着性細胞の選択的培養方法。前記細胞培養基材が、更に、Nイソプロピルアクリルアミドの重合体Bを含有する請求項1記載の血液由来単核細胞群からの接着性細胞の選択的培養方法。前記重合体Aと重合体Bとの質量比B/Aが、0.01~1.5の範囲にある請求項2記載の血液由来単核細胞群からの接着性細胞の選択的培養方法。前記重合体Aと、前記無機材料Cとの質量比C/Aが、0.03~0.8の範囲にある請求項1~3のいずれか一つに記載の血液由来単核細胞群からの接着性細胞の選択的培養方法。タンパク質分解酵素を使用せずに培養細胞を基材から剥離する請求項1~4のいずれか一つに記載の血液由来単核細胞群からの接着性細胞の選択的培養方法。25°C以下の低温処理及び/または物理的な外部刺激により該基材から培養細胞を剥離する請求項1~5のいずれかに記載の血液由来単核細胞群からの接着性細胞の選択的培養方法。前記血液が、臍帯血、末梢血である請求項1~6のいずれか一つに記載の血液由来単核細胞群からの接着性細胞の選択的培養方法。請求項1~7のいずれかに記載の培養方法で製造された血液由来単核細胞群からの接着性細胞。本発明が解決しようとする課題は、培養基材表面と血液由来の単核細胞群中の接着性細胞との間の接着力を制御し、高い培養増殖性と、培養後の低温処理による高い剥離性を有する血液由来単核細胞群からの接着性細胞の選択的培養方法、及び培養された接着性細胞を提供することにある。本発明者等は、上記課題を解決すべく鋭意研究した結果、メトキシエチルアクリレートaの重合体Aと、無機材料Cとを含有する細胞培養基材、及びメトキシエチルアクリレートaの重合体Aと、Nイソプロピルアクリルアミドの重合体Bと、無機材料Cとを含有する細胞培養基材の上では、血液由来単核細胞群中の接着性細胞が優れた増殖性を有し、また、上記培養基材を用いた場合、基材表面と細胞間の接着力を低く維持しながら、血液由来単核細胞群中の接着性細胞を選択的に培養することができ、更に、培養後低温処理により、培養基材の表面に接着し増殖された接着性細胞を基材表面から容易に剥離できる、血液由来単核細胞群からの接着性細胞の選択的培養方法を見出し、本発明を完成するに至った。即ち、本発明は、メトキシエチルアクリレートaの重合体Aと、水膨潤性粘土鉱物及びシリカから選択される1種以上の無機材料Cとを含有する細胞培養基材の上に、血液由来単核細胞群を播種し、成長因子を使用せずに血液由来単核細胞群中の接着性細胞のみを選択的に細胞培養基材上で接着増殖させ、培地交換により、培養基材表面に接着していない細胞を除き、次いで細胞培養基材の表面に接着し増殖された接着性細胞を基材から剥離することを特徴とする血液由来単核細胞群からの接着性細胞の選択的培養方法を提供する。また、本発明は、前記細胞培養基材が、更に、Nイソプロピルアクリルアミドの重合体Bを含有する血液由来単核細胞群からの接着性細胞の選択的培養方法を提供する。また、本発明は、前記培養方法で製造された血液由来単核細胞からの接着性細胞を提供する。本発明の細胞培養基材の最大の特徴は、上記無機材料Cの構成部分が血液由来単核細胞群中の接着性細胞の増殖を担い、メトキシエチルアクリレートaの重合体Aが細胞に対して低接着性を付与し、更に、重合体A及びNイソプロピルアクリルアミドの重合体Bは温度変化による細胞の剥離を担うことにある。それぞれの部分を接着性細胞の増殖、剥離の状況に応じてそれぞれ単独に調節できることにある。例えば、培養時37°C、接着性細胞が培養表面と弱い接着性を維持しながら、高い増殖能で増殖し、培養終了後、温度を30°C以下に下げることにより例えば室温、重合体Bの部分がより高い親水性を示し、培養表面と細胞間の接着力が更に弱くなり、培養された接着性細胞が容易に剥離することができる。また、メトキシエチルアクリレートaの重合体Aと細胞との間の接着性が十分に弱い場合、重合体A単独でも、培地の低温処理で、両者間の接着性が更に弱くなり、培養細胞を容易に剥離回収することができる。ここでいう接着性細胞とは、樹状細胞やマクロファージ細胞、間葉系幹細胞のような細胞のことをいい、また、ここで言う血液とは、ヒトまたはその他の動物の臍帯血液または末梢血液のことをいう。培養後、薬剤タンパク質分解酵素を使用することなく、低温処理のみで、培養細胞を容易に基材表面から剥離し、細胞にダメージを与えずに、高い収率で細胞を回収することができることにある。重合体Aは主にイオン結合や水素結合などにより無機材料Cと相互作用し結合している。この結合力は強く、容易にポリマーと無機材料Cを引き離すことはできない。本発明の血液由来単核細胞群からの接着性細胞の選択的培養方法は、細胞と培養表面の間に弱い接着力を維持しながら、高い増殖能を有し、培養した細胞を、薬剤トリプシン等を使用することなく、培養細胞を容易に培養基材表面から剥離、回収できる特徴を有する。また、本培養方法に用いられる培養基材は、γ線や電子線などの放射線滅菌が可能である特徴を有する。メトキシエチルアクリレートモノマーaの使用により、血液由来単核細胞群中の接着性細胞の初期接着性を低く維持でき、細胞増殖性と剥離性が良好な細胞培養基材が得られる。また、モノマーaは、これらの細胞培養基材をポリスチレンなどのプラスチック製基材等の支持体の表面に積層させる場合は、両者間の接着性が強く、製造が簡便にできる特徴も持っている。また、培養性や剥離性、及びその他の物性を調整するため、必要に応じてその他の共重合モノマーとして、例えば、スルホン基やカルボキシル基のようなアニオン基を有するアクリル系モノマー、4級アンモニウム基のようなカチオン基を有するアクリル系モノマー、4級アンモニウム基と燐酸基とを持つ両性イオン基を有するアクリル系モノマー、カルボキシル基とアミノ基とをもつアミノ酸残基を有するアクリル系モノマー、糖残基を有するアクリル系モノマー、また、水酸基を有するアクリル系モノマー、更にポリエチレングリコールのような親水性鎖とノニルフェニル基のような疎水基を合わせ持つ両親媒性アクリル系モノマー、N-置換メタアクリルアミド誘導体、N,N-ジ置換メタアクリルアミド誘導体、N,N’-メチレンビスアクリルアミドなどを併用することができる。本発明に用いる無機材料Cは、水膨潤性粘土鉱物及びシリカから選択される1種以上の無機材料である。水膨潤性粘土鉱物としては、層状に剥離可能な水膨潤性粘土鉱物が挙げられ、好ましくは水または水と有機溶剤との混合溶液中で膨潤し均一に分散可能な粘土鉱物、特に好ましくは水中で分子状単一層またはそれに近いレベルで均一分散可能な無機粘土鉱物が用いられる。具体的にはナトリウムを層間イオンとして含む水膨潤性ヘクトライト、水膨潤性モンモリライト、水膨潤性サポナイト、水膨潤性合成雲母、等が挙げられる。これらの粘土鉱物を混合して用いても良い。本発明に用いるシリカSiO2としては、コロイダルシリカが挙げられ、好ましくは水溶液中で均一に分散可能で、粒径が10nm~500nmのコロイダルシリカ、特に好ましくは粒径が10~50nmのコロイダルシリカが用いられる。本発明の細胞培養基材において、メトキシエチルアクリレートaの重合体AとNイソプロピルアクリルアミドの重合体Bとの質量比B/Aが、0.01~1.5であることが好ましく、0.03~0.7がより好ましく、0.1~0.3が特に好ましい。質量比B/Aがこの範囲であると、接着性細胞に対し良好な培養性と高い剥離性を兼ね備えることができ、好ましい。また、本発明の細胞培養基材において、重合体Aと無機材料Cとの質量比C/Aが、0.03~0.8であることが好ましく、0.05~0.3がより好ましく、0.07~0.1が特に好ましい。質量比C/Aがこの範囲であると、接着性細胞に対し良好な培養性と高い剥離性を兼ね備えることができ、好ましい。更に、本発明の細胞培養基材で培養した接着性細胞を、培地温度を30°C以下に下げ、静置して、細胞を自然に剥離させることもできるし、または培地温度を30°C以下に下げた後、以下に列挙した方法と併用して、細胞を容易に剥離させることもできる。1培養容器内の培地を軽く揺らして細胞を剥離させる方法。2ピペットで培地を吸ったり出したりするピペッティング操作で剥離させる方法。3ガラス棒、ピペットの先や、ゴムヘラ等を培養細胞と培養基材間に差し込んで、細胞を持ち上げるように剥離させる方法、4ストロー状の器材で吸引しながら剥離させる方法等がある。本発明の培養方法で製造された接着性細胞は、トリプシンなどのタンパク質分解酵素を使用しないため、細胞の基底タンパクがダメージを受けず、生体内の細胞形態により近い状態にあり、細胞活性も高く、移植後の定着性や治癒性が高いと考えられる。本発明の培養基材の製造方法は、メトキシエチルアクリレートa重合体AとNイソプロピルアクリルアミドの重合体Bが、無機材料Cと相互作用し、有機無機複合体を形成できるものであれば、特に限定されない。例えば、メトキシエチルアクリレートaと前記無機材料Cおよび重合開始剤Dとを混合した水媒体Eを支持体に塗布して、前記メトキシエチルアクリレートaを重合させることにより、重合体Aと前記無機材料Cとの複合体Xの薄層を形成する製造方法が挙げられる。前記製造方法に用いる水媒体Eは、モノマーaや無機材料Cなどを含むことができ、重合によって、物性のよい有機無機複合体が得られれば良く、特に限定されない。例えば水、または水と混和性を有する溶剤及び/またはその他の化合物を含む水溶液であってよく、その中には更に、必要に応じて防腐剤や抗菌剤、抗生物質、着色料、香料、酵素、たんぱく質、コラーゲン、糖類、アミノ酸類、ペプチド類、DNA類、塩類、水溶性有機溶剤類、界面活性剤、高分子化合物、レベリング剤などを含むことができる。本発明に用いられる重合開始剤Dとしては、公知のラジカル重合開始剤を適時選択して用いることができる。好ましくは水溶性または水分散性を有し、系全体に均一に含まれるものが好ましく用いられる。具体的には、重合開始剤として、水溶性の過酸化物、例えばペルオキソ二硫酸カリウムやペルオキソ二硫酸アンモニウム、水溶性のアゾ化合物、例えばVA-044、V-50、V-501いずれも和光純薬工業株式会社製の他、Fe2と過酸化水素との混合物などが例示される。触媒としては、3級アミン化合物であるN,N,N’,N’-テトラメチルエチレンジアミンなどは好ましく用いられる。但し、触媒は必ずしも用いなくてもよい。重合温度は、重合触媒や開始剤の種類に合わせて例えば0°C~100°Cが用いられる。重合時間も数十秒~数十時間の間で行うことが出来る。一方、光重合開始剤は、酸素阻害の影響を受けにくく、重合速度が速いため、重合開始剤Dとして好適に用いられる。具体的には、p-tert-ブチルトリクロロアセトフェノンなどのアセトフェノン類、4,4’-ビスジメチルアミノベンゾフェノンなどのベンゾフェノン類、2-メチルチオキサントンなどのケトン類、ベンゾインメチルエーテルなどのベンゾインエーテル類、ヒドロキシシクロヘキシルフェニルケトンなどのα-ヒドロキシケトン類、メチルベンゾイルホルメートなどのフェニルグリオキシレート類、メタロセン類などが挙げられる。本工程に用いられる光としては、電子線、γ線、X線、紫外線、可視光などを用いることができるが、中でも装置や取り扱いの簡便さやモノマーbの重合と同時に架橋を起こさせない観点から紫外線を用いることが好ましい。照射する紫外線の強度は10~500mW/cm2が好ましく、照射時間は一般に0.1秒~200秒程度である。通常の加熱によるラジカル重合においては、酸素が重合の阻害因子として働くが、本発明では、必ずしも酸素を遮断した雰囲気で溶液の調製および紫外線照射による重合を行う必要がなく、空気雰囲気でこれらを行うことが可能である。但し、紫外線照射を不活性ガス雰囲気下で行うことによって、更に重合速度を速めることが可能で、望ましい場合がある。また、本発明の培養基材の第二の製造例としては、水媒体E中の前記無機材料Cの濃度が下記式1又は式2で表される範囲となるように、前記モノマーaと前記無機材料Cと重合開始剤Dとを水媒体Eに混合した後、前記モノマーaを重合させることにより重合体Aと前記無機材料Cとの複合体Xの分散液Lを製造する第1工程、前記分散液Lを基材に塗布し、その後乾燥することにより前記複合体Xの薄層を形成する第2工程を順次行なうことを特徴とする細胞培養基材の製造方法が挙げられる。式1Ra<0.19のとき無機材料Cの濃度質量<12.4Ra0.05式2Ra≧0.19のとき無機材料Cの濃度質量<0.87Ra2.17式中、無機材料Cの濃度質量は、無機材料Cの質量を水媒体Eと無機材料Cの合計質量で除して100を掛けた数値、Raは無機材料Cと重合体Aとの質量比C/Aである。無機材料Cの水媒体に対する濃度質量は式1又は式2で表される範囲内であると、良好な複合体Xの分散液Lが得られ、支持体への塗布が容易で、平滑で均一な薄い塗膜が得られ、好ましい。本発明の製造方法で製造される分散液Lは、そのまま使用してもよいし、水洗などによる精製工程を経てから使用してもよい。また該分散液Lに更にレベリング剤や界面活性剤、ペプチド、たんぱく質、コラーゲン、アミノ酸類、高分子化合物などを添加して使用してもよい。以下、実施例により本発明を具体的に説明するが、本発明の範囲がこれらの実施例にのみ限定されるものではない。実施例1重合体Aと無機材料Cからなる培養機材重合体Bを含まない例。[メトキシエチルアクリレートa、無機材料C、水媒体Eを含む反応溶液の調製]メトキシエチルアクリレートa3.2g、無機材料Cとして水膨潤性粘土鉱物LaponiteXLGRockwoodAdditivesLtd社製0.2g、水媒体Eとして水100g、を均一に混合して反応溶液1を調製した。[重合開始剤Dを溶媒Fに溶解させた溶液の調整]溶媒Fとして、メタノール9.8g、重合開始剤Dとして1-ヒドロキシシクロヘキシルフェニルケトンイルガキュアー184チバガイギー社製0.2gを、均一に混合して溶液2を調製した。[複合体Xの分散液Lの調製第1工程]上記反応溶液1全量に、溶液2を250μl入れ、均一に分散させた後、365nmにおける紫外線強度が40mW/cm2の紫外線を180秒照射し乳白色の複合体Xの分散液L1を作製した。この反応系のRa=0.06、無機材料Cの濃度質量=0.20<12.4Ra0.05=0.79[培養基材複合体Xの薄層の調製第2工程]直径35mmのポリスチレン製シャーレCORNINGセルカルチャデイッシュ430165に、上記複合体Xの分散液L1を入れ、スピンコーターを用いて該分散液をシャーレの表面に薄く塗布した後、80°Cの熱風乾燥器中で10分間乾燥させ、次いで、滅菌水によりシャーレを洗浄した後、滅菌袋中でシャーレを40°C、5時間乾燥させて、細胞培養基材1を得た。[血液由来単核細胞の培養回収]上記得られた細胞培養基材1を照射線量10kGyの電子線で滅菌した日本照射サービス株式会社後、培地としてリンパ球増殖基本培地LGM3を適量入れ、ヒト末梢血液由来の単核細胞TakaraCC2072、タカラバイオ株式会社を2.0×106個/Dish播種して、5二酸化炭素中、37°Cで4日間培養を行った。次いで、ディッシュ中の培地及び浮遊している単核細胞を除いて、予め冷蔵庫で冷やした冷培地を入れ、10分間静置した後、ピペットで培地を吸ったり出したりするピペッティング操作を10回程行ったところ、培養基材の表面に接着、増殖されたほぼすべての接着性細胞が培養基材1の表面から剥離されたことが観察された。自然剥離された接着性細胞の数、及び培養基材表面から剥離せず残留した細胞の数をそれぞれ数えて、下記式3より、細胞の回収率を求めた。自然剥離された細胞数は64×104個で、剥離せず基材に残留した細胞数は1.1×104個、回収率は85であった。上記培養基材1で培養された接着性細胞の総数7.5×104個が、未コート培養シャーレCORNINGセルカルチャデイッシュ430165を用いた場合2.3×104個の33倍であった。3この実施例より、重合体Aと無機材料Cからなる培養基材重合体Bを含まないが、通常のティッシュカルチャデイッシュに比べ、細胞培養性が高く、また、培養基材表面と細胞間の接着性が低く、低温処理のみで細胞が容易に剥離できることが理解できる。実施例2重合体A、Bと無機材料Cからなる培養基材例。[N-イソプロピルアクリルアミドの重合体Bの水溶液の調製]N―イソプロピルアクリルアミド株式会社興人製1.7g、水10g、溶液2140μl、を混合した後、該溶液を入れるガラス容器の周りを冷却しながら約20°C、365nmにおける紫外線強度が40mW/cm2の紫外線を180秒照射し、Nイソプロピルアクリルアミドを重合させた後、更に水を5g添加し、重合体Bの水溶液PNIPA2を調製した。DIGITALVISCOMATE粘度計MODELVM100A、山一電機株式会社製を用いてこの溶液の粘度を測定して、粘度は511mPasであった。測定時の溶液温度は20°Cであった。また、ShodexGPCSystem-21装置昭和電工株式会社製で測定した結果、このポリN―イソプロピルアクリルアミドの重量平均分子量Mwは3.40×106であった。測定時の溶媒として10mmol/LのLiBrを含有するN,N-ジメチルホルムアミドDMF溶液を使用した。分子量の計算に使用したポリスチレン標準物質としては、STANDARDSH-75とSM-105キット昭和電工株式会社製を使用した。[メトキシエチルアクリレートa、無機材料C、水媒体Eを含む反応溶液の調製]メトキシエチルアクリレートa3.2g、無機材料Cとして水膨潤性粘土鉱物LaponiteXLGRockwoodAdditivesLtd社製0.2g、水媒体Eとして水100g、を均一に混合して反応溶液2を調製した。[複合体Xの分散液Lの調製第1工程]上記反応溶液2全量に、前記溶液2を250μl入れ、均一に分散させた後、365nmにおける紫外線強度が40mW/cm2の紫外線を180秒照射し乳白色の複合体Xの分散液L2を作製した。この反応系のRa=0.06、無機材料Cの濃度質量=0.20<12.4Ra0.05=0.79[培養基材複合体Xの薄層の調製第2工程]上記分散液L2全量に、Nイソプロピルアクリルアミドの重合体Bの水溶液PNIPA2を7g添加し、均一に混合した後、直径35mmのポリスチレン製シャーレCORNINGセルカルチャデイッシュ43016に入れ、スピンコーターを用いて該分散液をシャーレの表面に薄く塗布した後、80°Cの熱風乾燥器中で10分間乾燥させ、次いで、滅菌水によりシャーレを洗浄した後、滅菌袋中でシャーレを40°C、5時間乾燥させて、細胞培養基材2を得た。[血液由来単核細胞の培養回収]上記得られた細胞培養基材2を照射線量10kGyの電子線で滅菌した日本照射サービス株式会社後、実施例1と同様にして、ヒト末梢血液由来の単核細胞群の培養を行い、低温処理による接着性細胞の回収を行った。自然剥離された接着性細胞の数は6.7×104個で、剥離せず基材に残留した細胞数は3×103個、回収率は96であった。上記培養基材2で培養された接着性細胞の総数7×104個が、未コート培養シャーレCORNINGセルカルチャデイッシュ430165を用いた場合2.3×104個の3倍であった。この実施例より、重合体Aと無機材料Cに温度応答性を有する重合体Bを配合させた培養基材が、通常のティッシュカルチャデイッシュに比べ、細胞培養性が高く、低温処理のみで細胞が容易に剥離できることが理解できる。実施例3[メトキシエチルアクリレートa、無機材料C、水媒体Eを含む反応溶液の調製]メトキシエチルアクリレートa3.2g、無機材料Cとしてコロイダルシリカ20質量水溶液商品名スノーテックス20、日産化学工業株式会社製1gSiO2=0.2g、水媒体Eとして水100g、を均一に混合して反応溶液3を調製した。[複合体Xの分散液Lの調製第1工程]上記反応溶液3全量に、前記溶液2を250μl入れ、均一に分散させた後、365nmにおける紫外線強度が40mW/cm2の紫外線を180秒照射し乳白色の複合体Xの分散液L3を作製した。この反応系のRa=0.06、無機材料Cの濃度質量=0.20<12.4Ra0.05=0.79[培養基材複合体Xの薄層の調製第2工程]上記分散液L3全量に、Nイソプロピルアクリルアミドの重合体Bの水溶液PNIPA2を1g添加し、均一に混合した後、直径35mmのポリスチレン製シャーレCORNINGセルカルチャデイッシュ430165に入れ、スピンコーターを用いて該分散液をシャーレの表面に薄く塗布した後、80°Cの熱風乾燥器中で10分間乾燥させ、次いで、滅菌水によりシャーレを洗浄した後、滅菌袋中でシャーレを40°C、5時間乾燥させて、細胞培養基材3を得た。[血液由来単核細胞の培養回収]上記得られた細胞培養基材3を照射線量10kGyの電子線で滅菌した日本照射サービス株式会社後、実施例1と同様にして、ヒト末梢血液由来の単核細胞群の培養を行い、低温処理による接着性細胞の回収を行った。自然剥離された接着性細胞の数は4.4×104個で、剥離せず基材に残留した細胞数は1.1×104個、回収率は80であった。上記培養基材3で培養された接着性細胞の総数5.5×104個が、未コート培養シャーレCORNINGセルカルチャデイッシュ430165を用いた場合2.3×104個の2.4倍であった。この実施例より、無機材料Cとしてシリカを用いた場合の培養基材3が良好な培養性と自然剥離による高い回収率を有することが理解できる。比較例1直径35mmのポリスチレン製シャーレCORNINGセルカルチャデイッシュ430165をそのまま用いて、実施例1と同様にして、ヒト末梢血液由来の単核細胞群の培養を行った後、低温処理による接着細胞の回収を行ったところ、細胞は殆ど剥離しなかった。更にDPBSと025Trypsin-EDTAで処理し、細胞を回収し、細胞の数は2.3×104個であった。自然剥離による細胞の回収率は10以下であった。この比較例より、通常のポリスチレン製セルカルチャデイッシュでは、ヒト末梢血液由来の単核細胞に対する培養増殖性が低く、培養された細胞もディッシュ表面に強く接着し、薬剤トリプシンを使用しない場合、容易に剥離することができないことが理解できる。比較例2フィブロネクチン354008、日本ベクトンディッキンソン株式会の水溶液を5μg/cm2になるようにポリスチレン製シャーレCORNINGセルカルチャデイッシュ430165にコートしたものを用いて、実施例1と同様にして、ヒト末梢血液由来の単核細胞群の培養を行った後、低温処理による接着性細胞の回収を行ったところ、細胞は殆ど剥離しなかった。更にDPBSと025Trypsin-EDTAで処理し、細胞を回収し、細胞の数は1.1×104個であった。自然剥離による細胞の回収率は10以下であった。この比較例より、通常細胞の接着、伸展、及び増殖を促進するフィブロネクチンをコートした培養シャーレでは、ヒト末梢血液由来の単核細胞群中の接着性細胞に対する培養増殖性が低く、培養された接着性細胞もディッシュ表面に強く接着し、薬剤トリプシンを使用しない場合、容易に剥離することができないことが理解できる。比較例3重合体Aのみの無機材料Cを含まない基材の例[メトキシエチルアクリレートa、水媒体Eを含む反応溶液の調製]メトキシエチルアクリレートa3.2g、水媒体Eとして水100g、を均一に混合して反応溶液3’を調製した。実施例1と同様にして基材3’を製造した。実施例1と同様にして、ヒト末梢血液由来の単核細胞群を播種し、4日間培養したが、基材3’の表面に接着する細胞は殆ど見当たらなかった。この比較例より、無機材料Cを含まない、重合体Aのみの基材では、細胞との接着性が低過ぎて、細胞が増殖できないことが理解できる。"