"ポリペプチドP及び基材Bからなり、接着性細胞Sを細胞集合体を培養するための細胞集合体培養用基材であって、Pがアミノ酸配列Xを有するポリペプチドであり、Xが下記ペンタペプチド配列、下記ヘキサペプチド配列、AlaGlyValProGlyPheGlyValGly配列12及びAlaGlyValProGlyLeuGlyValGly配列13からなる群より選ばれる少なくとも1種である細胞集合体培養用基材。ペンタペプチド配列:GlyValGlyValPro配列1、ValGlyValProGly配列2、GlyValProGlyVal配列3、ValProGlyValGly配列4及びProGlyValGlyVal配列5からなる群より選ばれる少なくとも1種の配列。ヘキサペプチド配列:GlyValGlyValAlaPro配列6、ValGlyValAlaProGly配列7、GlyValAlaProGlyVal配列8、ValAlaProGlyValGly配列9、AlaProGlyValGlyVal配列10及びProGlyValGlyValAla配列11からなる群より選ばれる少なくとも1種の配列。ポリペプチドPが、さらに、補助アミノ酸配列Yを有するポリペプチドであって、YがGlyAla配列、GlyAlaGlyAlaGlySer配列14、GlyAlaGlyAlaGlyTyr配列15、GlyAlaGlyValGlyTyr配列16、GlyAlaGlyTyrGlyVal配列17及び下記配列Y-6からなる群より選ばれる少なくとも1種である請求項1に記載の細胞集合体培養用基材。配列Y-6:AspGlyGlyAlafGlyGlyAla配列。なお、fは1~44の整数である。ポリペプチドPが、さらに、アミノ酸配列X’を有するポリペプチドであって、X’がアミノ酸配列X中の1個又は2個のValがLysに置換された配列である請求項1又は2に記載の細胞集合体培養用基材。ポリペプチドPが、GlyValGlyValPro配列1、GlyLysGlyValPro配列36及びGlyAlaGlyAlaGlySer配列14を有するポリペプチドである請求項1~3のいずれかに記載の細胞集合体培養用基材。ポリペプチドPが下記ポリペプチドP1~P6からなる群より選ばれる少なくとも1種である請求項4に記載の細胞集合体培養用基材。P1:GlyValGlyValPro配列1を56個、GlyLysGlyValPro配列36を8個及びGlyAlaGlyAlaGlySer配列14を16個有するポリペプチドP2:GlyValGlyValPro配列1を119個、GlyLysGlyValPro配列36を17個及びGlyAlaGlyAlaGlySer配列14を34個有するポリペプチドP3:GlyValGlyValPro配列1を49個、GlyLysGlyValPro配列36を7個及びGlyAlaGlyAlaGlySer配列14を28個有するポリペプチドP4:GlyValGlyValPro配列1を91個、GlyLysGlyValPro配列36を13個及びGlyAlaGlyAlaGlySer配列14を52個有するポリペプチドP5:GlyValGlyValPro配列1を120個、GlyLysGlyValPro配列36を8個及びGlyAlaGlyAlaGlySer配列14を32個有するポリペプチドP6:GlyValGlyValPro配列1を90個、GlyLysGlyValPro配列36を6個及びGlyAlaGlyAlaGlySer配列14を36個有するポリペプチド細胞集合体培養用基材に播種した接着性細胞Sのうち、基材に接着するSの割合を示す細胞接着率が4~20である請求項1~5のいずれかに記載の細胞集合体培養用基材。細胞集合体培養用基材表面におけるポリペプチドPの含有量が、細胞集合体培養用基材の単位面積cm2あたり0.1~5μgである請求項1~6のいずれかに記載の細胞集合体培養用基材。請求項1~7のいずれかに記載の細胞集合体培養用基材を用いて接着性細胞Sを培養する細胞集合体の生産方法。本発明の目的は、接着性細胞を培養する基材であって、アポトーシスを起こしにくく、培養した細胞の生存率が高い細胞集合体を生産することができる細胞集合体培養用基材を提供することである。本発明者らは、鋭意研究を重ねてきた結果、本発明に到達した。すなわち、本願発明の細胞集合体培養用基材は、ポリペプチドP及び基材Bからなり、接着性細胞Sを細胞集合体を培養するための細胞集合体培養用基材であって、Pがアミノ酸配列Xを有するポリペプチドであり、Xが下記ペンタペプチド配列、下記ヘキサペプチド配列、AlaGlyValProGlyPheGlyValGly配列12及びAlaGlyValProGlyLeuGlyValGly配列13からなる群より選ばれる少なくとも1種である細胞集合体培養用基材である。ペンタペプチド配列:GlyValGlyValPro配列1、ValGlyValProGly配列2、GlyValProGlyVal配列3、ValProGlyValGly配列4及びProGlyValGlyVal配列5からなる群より選ばれる少なくとも1種の配列。ヘキサペプチド配列:GlyValGlyValAlaPro配列6、ValGlyValAlaProGly配列7、GlyValAlaProGlyVal配列8、ValAlaProGlyValGly配列9、AlaProGlyValGlyVal配列10及びProGlyValGlyValAla配列11からなる群より選ばれる少なくとも1種の配列。本発明の細胞集合体培養用基材は、アポトーシス抑制効果が高く、培養した細胞の生存率が高い細胞集合体を生産することができるという効果を奏する。また、本発明の細胞集合体の生産方法は、生物活性の高い細胞集合体を生産できる。本発明の細胞集合体培養用基材は、ポリペプチドP及び基材Bからなり、接着性細胞Sの細胞集合体を培養するための細胞集合体培養用基材である。本発明において細胞集合体培養は、接着性細胞Sの集合体を形成させ、Sを三次元の構造体として培養する方法である。また、本発明において細胞集合体は、接着性細胞Sが多数凝集して三次元の構造体となったものを示す。ポリペプチドPは、アミノ酸配列Xを含む。アミノ酸配列Xは、下記ペンタペプチド配列、下記ヘキサペプチド配列、AlaGlyValProGlyPheGlyValGly配列12及びAlaGlyValProGlyLeuGlyValGly配列13からなる群から選ばれる少なくとも1種の配列。ペンタペプチド配列:GlyValGlyValPro配列1、ValGlyValProGly配列2、GlyValProGlyVal配列3、ValProGlyValGly配列4、ProGlyValGlyVal配列5からなる群より選ばれる少なくとも1種の配列。ヘキサペプチド配列:GlyValGlyValAlaPro配列6、ValGlyValAlaProGly配列7、GlyValAlaProGlyVal配列8、ValAlaProGlyValGly配列9、AlaProGlyValGlyVal配列10、ProGlyValGlyValAla配列11からなる群より選ばれる少なくとも1種の配列。上記アミノ酸配列Xのうち、細胞の低接着性及びアポトーシス抑制効果の観点から、ペンタペプチド配列が好ましく、さらに好ましくはGlyValGlyValPro配列1である。ポリペプチドPは、アミノ酸配列XをPの1分子中に少なくとも1個有すればよいが、細胞の低接着性及びアポトーシス抑制効果の観点から、1分子中に10~200個有するものが好ましく、さらに好ましくは45~130個有するものである。なお、2種以上のアミノ酸配列XがポリペプチドP1分子中に含まれていてもよい。ポリペプチドPは、さらに、補助アミノ酸配列Yを有してもいい。補助アミノ酸Yは、GlyAla配列、GlyAlaGlyAlaGlySer配列14、GlyAlaGlyAlaGlyTyr配列15、GlyAlaGlyValGlyTyr配列16、GlyAlaGlyTyrGlyVal配列17及び下記配列Y-6からなる群より選ばれる少なくとも1種である。配列Y-6:AspGlyGlyAlafGlyGlyAla配列。なお、fは1~44の整数である。補助アミノ酸配列Yのうち、細胞の低接着性およびポリペプチドPの熱安定性の観点から、GlyAla配列、GlyAlaGlyAlaGlySer配列14、GlyAlaGlyAlaGlyTyr配列15が好ましく、さらに好ましくはGlyAlaGlyAlaGlySer配列14である。ポリペプチドPが補助アミン酸配列Yを有する場合、YをPの1分子中に少なくとも1個有すればよいが、細胞の低接着性及びポリペプチドPの熱安定性の観点から、1分子中に10~100個有するものが好ましく、さらに好ましくは15~60個有するものである。なお、2種以上の補助アミノ酸配列YがP1分子中に含まれていてもよい。ポリペプチドPが補助アミノ酸配列Yを有する場合、ポリペプチドPの熱安定性の観点から、Pの分子中にYが複数回繰り返した配列を有することが好ましい。例えば、GlyAlaa配列、GlyAlaGlyAlaGlySerb配列、GlyAlaGlyAlaGlyTyrc配列、GlyAlaGlyValGlyTyrd配列、GlyAlaGlyTyrGlyVale配列及び{AspGlyGlyAlafGlyGlyAla}g配列が挙げられる。なお、aは1~25の整数、b、c、d及びeは1~8の整数、fは1~44の整数、fが1の場合gは1~7の整数、fが2の場合gは1~6の整数、fが3又は4の場合gは1~5の整数、fが5又は6の場合gは1~4の整数、fが7~10の整数の場合gは1~3、fが11~19の整数の場合gは1又は2、fが20~44の整数の場合gは1である。GlyAlaa配列を有する補助アミノ酸配列としては、配列18~20で表されるアミノ酸配列等が挙げられる。GlyAlaGlyAlaGlySerb配列を有する補助アミノ酸配列としては、配列21~23で表されるアミノ酸配列等が挙げられる。GlyAlaGlyAlaGlyTyrc配列を有する補助アミノ酸配列としては、配列24~26で表されるアミノ酸配列等が挙げられる。GlyAlaGlyValGlyTyrd配列を有する補助アミノ酸配列としては、配列27~29で表されるアミノ酸配列等が挙げられる。GlyAlaGlyTyrGlyVale配列を有する補助アミノ酸配列としては、配列30~32で表されるアミノ酸配列等が挙げられる。{AspGlyGlyAlafGlyGlyAla}g配列を有する補助アミノ酸配列としては、配列33~35で表されるアミノ酸配列等が挙げられる。これらの補助アミノ酸配列Yのうち、細胞の低接着性及びポリペプチドPの熱安定性の観点から、配列21~23が好ましく、さらに好ましくは配列21及び22である。補助アミノ酸配列Yは、細胞の低接着性及びポリペプチドPの熱安定性の観点から、Gly及び/又はAlaを含むことが好ましい。Gly及び/又はAlaを含む場合、これらの合計含有割合は、補助アミノ酸配列Yの全アミノ酸個数に基づいて、細胞の低接着性及びポリペプチドPの熱安定性の観点から、10~100が好ましく、さらに好ましくは20~95、特に好ましくは30~90、最も好ましくは40~85である。補助アミノ酸配列YにGly及びAlaの両方を含む場合、これらの含有個数割合Gly/Alaは、細胞の低接着性及びポリペプチドPの熱安定性の観点から、0.03~40が好ましく、さらに好ましくは0.08~13、特に好ましくは0.2~5である。ポリペプチドPは、さらに、アミノ酸配列X’を有してもいい。アミノ酸配列X’は、アミノ酸配列X中の1個又は2個のValがLysに置換された配列である。X’としては、アミノ酸配列X中の1個のValがLysに置換された下記配列X’-1~X’-4又はアミノ酸配列X中の2個のValがLysに置換された下記配列X’-5~X’-8を含む。X’-1:ペンタペプチド配列中の1個のValがLysに置換された配列。具体的には、GlyLysGlyValPro配列36、GlyValGlyLysPro配列37、LysGlyValProGly配列38、ValGlyLysProGly配列39、GlyLysProGlyVal配列40、GlyValProGlyLys配列41、LysProGlyValGly配列42、ValProGlyLysGly配列43、ProGlyLysGlyVal配列44又はProGlyValGlyLys配列45。X’-2:ヘキサペプチド配列中の1個のValがLysに置換された配列。具体的には、GlyLysGlyValAlaPro配46、GlyValGlyLysAlaPro配列47、LysGlyValAlaProGly配列48、ValGlyLysAlaProGly配列49、GlyLysAlaProGlyVal配列50、GlyValAlaProGlyLys配列51、LysAlaProGlyValGly配列52、ValAlaProGlyLysGly配列53、AlaProGlyLysGlyVal配列54、AlaProGlyValGlyLys配列55、ProGlyLysGlyValAla配列56又はProGlyValGlyLysAla配列57。X’-3:配列12のアミノ酸配列中の1個のValがLysに置換された配列。具体的には、AlaGlyLysProGlyPheGlyValGly配列58又はAlaGlyValProGlyPheGlyLysGly配列59。X’-4:配列13のアミノ酸配列中の1個のValがLysに置換された配列。具体的には、AlaGlyLysProGlyLeuGlyValGly配列60又はAlaGlyValProGlyLeuGlyLysGly配列61。X’-5:ペンタペプチド配列中の2個のValがLysに置換された配列。具体的には、GlyLysGlyLysPro配列62、LysGlyLysProGly配列63、GlyLysProGlyLys配列64、LysProGlyLysGly配列65又はProGlyLysGlyLys配列66。X’-6:ヘキサペプチド配列中の2個のValがLysに置換された配列。具体的には、GlyLysGlyLysAlaPro配列67、LysGlyLysAlaProGly配列68、GlyLysAlaProGlyLys配列69、LysAlaProGlyLysGly配列70、AlaProGlyLysGlyLys配列71又はProGlyLysGlyLysAla配列72。X’-7:配列12のアミノ酸配列中の2個のValがLysに置換された配列。具体的には、AlaGlyLysProGlyPheGlyLysGly配列73。X’-8:配列13のアミノ酸配列中の2個のValがLysに置換された配列。具体的には、AlaGlyLysProGlyLeuGlyLysGly配列74。アミノ酸配列X’のうち、細胞の低接着性及びアポトーシス抑制の観点から、X’-1が好ましく、さらに好ましくはGlyLysGlyValPro配列36である。ポリペプチドP1分子中には、2種以上のX’を含んでもいい。ポリペプチドPがアミノ酸配列X’を有するものである場合、P1分子中にX’を少なくとも1個有すればよいが、細胞の低接着性及びアポトーシス抑制の観点から、P1分子中に1~20個有するものが好ましく、さらに好ましくは6~17個、最も好ましくは13個である。また、P1分子中のXの数とX’の数との比X/X’は、細胞の低接着性及びアポトーシス抑制の観点から、5~20が好ましく、さらに好ましくは7~15である。上記アミノ酸配列X及び/又はX’の両端には、介在アミノ酸配列Zを含んでもいい。介在アミノ酸配列Zとしては、アミノ酸配列X、アミノ酸配列X’及び補助アミノ酸配列Y以外のアミノ酸配列が含まれ、アラニンAla、グリシンGly、セリンSer、トレオニンThr、バリンVal、ロイシンLeu、イソロイシンIle、システインCys、メチオニンMet、フェニルアラニンPhe、チロシンTyr、プロリンPro、トリプトファンTrp、アスパラギンAsn、グルタミンGln、アスパラギン酸Asp、グルタミン酸Glu、アルギニンArg、リジンLys及び/又はヒスチジンHis等から構成されるアミノ酸配列が含まれる。Zは、アミノ酸1個又はアミノ酸が2個以上結合したペプチド配列である。Zを構成するアミノ酸の数は、ペプチドの熱安定性の観点から、1~30個が好ましく、さらに好ましくは1~15個、特に好ましくは1~10個である。ポリペプチドPは、発現させたPの精製または検出を容易にするために、PのN又はC末端に特殊なアミノ酸配列を有するタンパク質又はペプチド以下これらを精製タグと称するを有してもいい。精製タグとしては、アフィニティー精製用のタグが利用される。そのような精製タグとしては、ポリヒスチジンからなる6×Hisタグ、V5タグ、Xpressタグ、AU1タグ、T7タグ、VSV-Gタグ、DDDDKタグ、Sタグ、CruzTag09TM、CruzTag22TM、CruzTag41TM、Glu-Gluタグ、Ha.11タグ及びKT3タグ等がある。以下に、各精製タグiとそのタグを認識結合するリガンドiiとの組み合わせの一例を示す。i-1グルタチオン-S-トランスフェラーゼGTSii-1グルタチオンi-2マルトース結合タンパク質MBPii-2アミロースi-3HQタグii-3ニッケルi-4Mycタグii-4抗Myc抗体i-5HAタグii-5抗HA抗体i-6FLAGタグii-6抗FLAG抗体i-76×Hisタグii-7ニッケル又はコバルト前記精製タグ配列の導入方法としては、発現用ベクターにおけるポリペプチドPをコードする核酸の5’又は3’末端に精製タグをコードする核酸を挿入する方法や市販の精製タグ導入用ベクターを使用する方法等が挙げられる。ポリペプチドPは、直鎖構造を有するものである分岐構造、環状構造及び架橋構造を持たない。ことが好ましい。なお、直鎖構造にはβシート構造直鎖状ペプチドが折れ曲がってこの部分同士が平行に並び、その間に水素結合が作られる二次構造も含まれる。ポリペプチドPの数平均分子量以下、Mnと略記は、細胞の低接着性及びアポトーシス抑制の観点から、50,000~100,000が好ましく、さらに好ましくは60,000~80,000、特に好ましくは65,000~75,000である。なお、Mnは、公知の方法により測定でき、例えば、SDS-PAGESDSポリアクリルアミドゲル電気泳動法により、測定サンプルを分離し、泳動距離を標準物質と比較することによって求められる。好ましいポリペプチドPの一部を以下に例示する。iアミノ酸配列XがGlyValGlyValPro配列1の場合この場合、ポリペプチドPが、GlyValGlyValPro配列1、GlyLysGlyValPro配列36及びGlyAlaGlyAlaGlySer配列14を有するポリペプチドであることが好ましい。具体的には以下の例が挙げられる。i-1GlyValGlyValPro配列1を56個、GlyLysGlyValPro配列36を8個及びGlyAlaGlyAlaGlySer配列14を16個有するポリペプチドP1。P1として、具体的には、GlyValGlyValPro配列1が4回繰り返した配列に、GlyLysGlyValPro配列361個が化学結合し、さらにGlyValGlyValPro配列1が3回繰り返した配列が化学結合し、さらにGlyAlaGlyAlaGlySer配列14が2回繰り返した配列が化学結合したアミノ酸ブロックL-1が8回繰り返し化学結合したMn35,164の配列75のポリペプチドが含まれる。i-2GlyValGlyValPro配列1を119個およびGlyLysGlyValPro配列36を17個及びGlyAlaGlyAlaGlySer配列14を34個有するポリペプチドP2P2として、具体的には、上記アミノ酸ブロックL-1が17回繰り返し化学結合したMn76,581の配列76のポリペプチドが含まれる。i-3GlyValGlyValPro配列1を49個およびGlyLysGlyValPro配列36を7個及びGlyAlaGlyAlaGlySer配列14を28個有するポリペプチドP3P3として、具体的には、GlyValGlyValPro配列1が4回繰り返した配列に、GlyLysGlyValPro配列361個が化学結合し、さらにGlyValGlyValPro配列1が3回繰り返した配列が化学結合し、GlyAlaGlyAlaGlySer配列14が4回繰り返した配列が化学結合したアミノ酸ブロックL-2が7回繰り返し化学結合したMn35,863の配列77のポリペプチド。i-4GlyValGlyValPro配列1を91個およびGlyLysGlyValPro配列36を13個及びGlyAlaGlyAlaGlySer配列14を52個有するポリペプチドP4P4として、具体的には、上記アミノ酸ブロックL-2が13回繰り返し化学結合したMn69,772の配列78のポリペプチド。i-5GlyValGlyValPro配列1を120個およびGlyLysGlyValPro配列36を8個及びGlyAlaGlyAlaGlySer配列14を32個有するポリペプチドP5P5として、具体的には、GlyAlaGlyAlaGlySer配列14が2回繰り返した配列に、GlyValGlyValPro配列1が4回繰り返した配列が化学結合し、GlyLysGlyValPro配列36を結合し、さらにGlyValGlyValPro配列1が11回繰り返した配列が化学結合し、さらにGlyAlaGlyAlaGlySer配列14が2回繰り返した配列が化学結合したアミノ酸ブロックL-3が8回繰り返し化学結合したMn71,445の配列79のポリペプチド。i-6GlyValGlyValPro配列1を90個およびGlyLysGlyValPro配列36を6個及びGlyAlaGlyAlaGlySer配列14を36個有するポリペプチドP6P6として、具体的には、GlyAlaGlyAlaGlySer配列14が2回繰り返した配列に、GlyValGlyValPro配列1が4回繰り返した配列が化学結合し、GlyLysGlyValPro配列36を結合し、さらにGlyValGlyValPro配列1が11回繰り返した配列が化学結合し、さらにGlyAlaGlyAlaGlySer配列14が4回繰り返した配列が化学結合したアミノ酸ブロックL-4が6回繰り返し化学結合したMn64,694の配列80のポリペプチド。iiアミノ酸配列XがGlyValGlyValAlaPro配列6の場合ii-1GlyValGlyValAlaPro配列6を91個およびGlyLysGlyValAlaPro配列46を13個及びGlyAlaGlyAlaGlySer配列14を52個有するポリペプチドP7P7として、具体的には、GlyValGlyValAlaPro6が4回繰り返した配列に、GlyLysGlyValAlaPro配列46を結合し、さらにGlyValGlyValAlaPro配列6が3回繰り返した配列が化学結合し、さらにGlyAlaGlyAlaGlySer配列14が4回繰り返した配列が化学結合したアミノ酸ブロックL-5が13回繰り返し化学結合したMn71,195の配列81のポリペプチド。iiiアミノ酸配列XがAlaGlyValProGlyPheGlyValGly配列12の場合iii-1AlaGlyValProGlyPheGlyValGly配列12を91個およびAlaGlyLysProGlyPheGlyValGly配列58を13個及びGlyAlaGlyAlaGlySer配列14を52個有するポリペプチドP8P8として、具体的には、AlaGlyValProGlyPheGlyValGly配列12が4回繰り返した配列に、AlaGlyLysProGlyPheGlyValGly配列58を結合し、さらにAlaGlyValProGlyPheGlyValGly配列12が3回繰り返した配列が化学結合し、さらにGlyAlaGlyAlaGlySer配列14が4回繰り返した配列が化学結合したアミノ酸ブロックL-6が13回繰り返し化学結合したMn105,933の配列82のポリペプチド。ポリペプチドPは、人工的に製造でき、有機合成法酵素法、固相合成法及び液相合成法等、及び遺伝子組み換え法等によって容易に製造できる。有機合成法に関しては、生化学実験講座1、タンパク質の化学IV1981年7月1日、日本生化学会編、株式会社東京化学同人発行又は続生化学実験講座2、タンパク質の化学下昭和62年5月20日、日本生化学会編、株式会社東京化学同人発行に記載されている方法等が適用できる。遺伝子組み換え法に関しては、特許第3338441号公報に記載されている方法等が適用できる。有機合成法及び遺伝子組み換え法とも、ポリペプチドPを作製できるが、ポリペプチドPを安価に大量生産できるという観点等から、遺伝子組み換え法が好ましい。本発明の細胞集合体培養用基材は、上記ポリペプチドPを有していることにより、基材を用いて細胞を培養した際に、細胞表面に存在するインテグリンとPが結合し、細胞内にシグナルが伝達されるので、アポトーシス抑制効果が発揮されると推察される。基材Bの素材としては、プラスチック例えば、ポリスチレン、ポリアルフォオレフィン、ポリプトピレン、ポリエチレン及びこれらの複合体等及び/又は無機物例えば、ガラス、セラミックス、金属及びこれらの複合体等が挙げられる。Bの素材としては、プラスチックやガラスなど、透明で培養中の細胞を顕微鏡観察ができるものが好ましい。基材Bとしては、従来の細胞培養細胞集合体培養及び従来の接着培養に用いる基材を制限無く使用できるが、入手が容易である観点から、細胞培養容器が好ましい。細胞培養容器としては、マルチウェルプレート例えば、6穴プレート、24穴プレート及び96穴プレート等やシャーレ例えば、直径mm;35、60及び100等、T-フラスコ例えば、容量ml;25、75、150及び225等、ローラーボトル例えば、培養面積cm2;690、970、1200及び1300等等が用いられる。本発明において、細胞集合体培養用基材表面におけるポリペプチドPのコーティング量は、細胞の低接着性及びアポトーシス抑制の観点から、細胞集合体培養用基材の単位面積cm2あたり0.1~5μgが好ましく、さらに好ましくは1.0~2.1μgである。細胞集合体培養用基材表面におけるポリペプチドPのコーティング量は、具体的には、下記の測定法により測定できる。<ポリペプチドPのコーティング量の測定>MicroBCATMproteinassaykitTHERMOFisherScientific社製付属のReagentA溶液:ReagentB溶液:ReagentC溶液=25:24:1の混合液Cを作成する。細胞集合体培養用基材に対して、測定したい基材の表面積に対して312.5μL/cm2で混合液Cを加え、37°Cで2時間静置する。静置2時間後に、ビシンコニン酸BCAとCuのキレート生成量を、450nm対照波長630nmの吸光度でプレートリーダーコロナ電気株式会社製MTP-32を用いて室温で測定する。さらに、あらかじめウシ血清アルブミンにより作成した検量線からコーティング量を得る。本発明の細胞集合体培養用基材は、基材B及びポリペプチドPからなるものであればよく、ポリペプチドPが基材Bの表面に物理吸着及び/又は化学結合イオン結合及び/又は水素結合したものが含まれる。物理吸着させる方法としては、ポリペプチドPの水溶液に、基材Bを浸して、37°Cで所定の時間吸着させる方法が含まれる。吸着後は、余剰の溶液を除去もしくは乾燥させることにより、細胞集合体培養基材を得ることができる。化学結合させる方法としては、基材Bがプラスチック材料の場合は、例えば、N-ヒドロキシコハク酸イミド又はカルボジイミド等の存在下で、基材BとペプチドPを接触させることによりエステル化又はアミド化させ、洗浄乾燥させる方法等が含まれる。基材Bが金属材料又は無機材料の場合、シランカップリング剤又はチタンカップリング剤などを基材Bと反応させた後、ぺプチドPとグルタルアルデヒドで架橋させ、洗浄乾燥させる方法が含まれる。上記のうち、細胞の低接着性及びアポトーシス抑制の観点から、物理吸着が好ましい。本発明において接着性細胞Sとしては、一般的に接着性細胞に分類される細胞が含まれ、具体的には、幹細胞、前駆細胞、上皮細胞、内皮細胞及び癌細胞等が挙げられる。細胞集合体培養用基材に播種した接着性細胞Sのうち、基材に接着するSの割合を示す細胞接着率は、細胞集合体の培養に用いる観点から、4~20であることが好ましく、さらに好ましくは10~20である。細胞接着率は、具体的には下記測定法によって測定できる。細胞集合体培養用基材に、ポリペプチドPを付着させた部分の面積に対して312.5μL/cm2で0.02Mリン酸緩衝液pH7.2、純度99.5重量塩化ナトリウムを0.85重量含有するリン酸緩衝生理食塩水以下、PBSと略記を加えて2回洗浄し、さらに脱イオン水をポリペプチドPを付着させた部分の面積に対して312.5μL/cm2で加えて1回洗浄する。次に、血清を含まないDMEM培地ICNBiomedicals社製をポリペプチドPを付着させた部分の面積に対して312.5μL/cm2で加え、37°Cインキュベーター内に1時間保存する。1時間後、MC3T3-E1細胞大日本製薬株式会社製を、ポリペプチドPを付着させた部分の面積に対して2万cells/cm2で添加し、37°C、二酸化炭素濃度5容量のインキュベーター中にて2時間放置して培養する。培養終了後、アスピレーターを用いて培地を除去し、細胞に直接当たらないように注意しながら生理食塩水をポリペプチドPを付着させた部分の面積に対して312.5μL/cm2で加え、アスピレーターを用いて生理食塩水を除去する。次にPBSをポリペプチドPを付着させた部分の面積に対して156.25μL/cm2で加え、さらにテトラカラーワン生化学工業株式会社をポリペプチドPを付着させた部分の面積に対して31.25μL/cm2で加え、37°C、二酸化炭素濃度5容量のインキュベーター中に4時間放置する。4時間後に、ホルマザン生成量Xを、450nm対照波長630nmの吸光度でプレートリーダーコロナ電気株式会社製MTP-32を用いて測定する。ポリペプチドPの代わりにフィブロネクチンを用いた比較用細胞集合体培養用基材を作成し、上記と同様の実験を行う。ここで、基材表面におけるフィブロネクチンのコーティング量は、0.5μg/cm2以上であり、播種したすべての細胞が接着したことを顕微鏡観察で確認したものを用いる。この比較用細胞集合体培養用基材のホルマザン生成量X0を測定する。X0が細胞接着率100であるとして、X及びX0を下記式に当てはめ、細胞接着率を算出する。細胞接着率=X/X0×100本発明の細胞集合体の生産方法は、上記細胞集合体培養用基材を用いて接着性細胞Sを培養する方法である。本発明の細胞集合体の生産方法は、上記細胞集合体培養用基材を使用する以外は、従来の細胞集合体の生産方法と同様でいい。例えば、下記工程1~2により生産する方法が含まれる。1細胞集合体培養用基材と細胞懸濁液とを接触させる工程2所定の温度で所定の時間培養する工程工程1において、細胞集合体培養用基材は、上記細胞集合体培養用基材である。工程1において、細胞懸濁液は、培地中に細胞を懸濁させた水溶液である。培地としては、無血清培地及び血清培地が含まれる。無血清培地としては、Grace培地、IPL-41培地、Schneider’s培地、Opti-PROTMSFM培地、Opti-MEMTMI培地、VP-SFM培地、CD293培地、293SFMII培地、CD-CHO培地、CHO-S-SFMII培地、FreeStyleTM293培地、CD-CHOAGTTM培地、RPMI培地、DMEM培地、MEM培地、Eagle’sMEM培地、BME培地、DME培地、αMEM培地、IMEM培地、ES培地、DM-160培地、Fisher培地、F12培地、WE培地、ASF103培地、ASF104培地、ASF301培地、TC-100培地、Sf-900II培地、Ex-cell405培地、Express-Five培地、Drosophila培地及びこれらの混合培地等が挙げられる。これらのうち、細胞の安定性の観点から、Opti-PROTMSFM培地、Opti-MEMTMI培地、VP-SFM培地、CD293培地、293SFMII培地、CD-CHO培地、CHO-S-SFMII培地、FreeStyleTM293培地、CD-CHOAGTTM培地、DMEM培地及びこれらの混合培地が好ましく、さらに好ましくはOpti-PROTMSFM培地、VP-SFM培地、CD293培地、293SFMII培地、FreeStyleTM293培地、DMEM培地及びこれらの混合培地である。血清培地としては、一般の培地DMEM培地、DME培地、RPMI培地、MEM培地、BME培地、DME培地、αMEM培地、IMEM培地、ES培地、DM-160培地、Fisher培地、F12培地、WE培地、ASF103培地、ASF104培地、ASF301培地、TC-100培地、Sf-900II培地、Ex-cell405培地、Express-Five培地、Drosophila培地及びこれらの混合培地等に血清を加えたもの等が挙げられる。血清としては、ヒト血清、及び動物血清ウシ血清、ウマ血清、ヤギ血清、ヒツジ血清、ブタ血清、ウサギ血清、ニワトリ血清、ラット血清、及びマウス血清等が含まれる。培地中には、成長因子を添加してもいい。成長因子としては、上皮成長因子Epidermalgrowthfactor:EGF、インスリン様成長因子Insulin-likegrowthfactor:IGF、トランスフォーミング成長因子Transforminggrowthfactor:TGF、神経成長因子Nervegrowthfactor:NGF、脳由来神経栄養因子Brain-derivedneurotrophicfactor:BDNF、血管内皮細胞増殖因子Vesicularendothelialgrowthfactor:VEGF、顆粒球コロニー刺激因子Granulocyte-colonystimulatingfactor:G-CSF、顆粒球マクロファージコロニー刺激因子Granulocyte-macrophage-colonystimulatingfactor:GM-CSF、血小板由来成長因子Platelet-derivedgrowthfactor:PDGF、エリスロポエチンErythropoietin:EPO、トロンボポエチンThrombopoietin:TPO、塩基性線維芽細胞増殖因子basicfibroblastgrowthfactor:bFGFまたはFGF2、肝細胞増殖因子Hepatocytegrowthfactor:HGF等が挙げられる。細胞としては、上記接着性細胞Sを用いる。細胞懸濁液中の細胞の濃度cells/mlは、細胞の生存率の観点から、103~107cells/mlが好ましく、さらに好ましくは104~106cells/mlである。細胞懸濁液の温度は、通常細胞培養に用いられる温度であれば特に制限ないが、細胞の生存率の観点から、25~45°Cが好ましく、さらに好ましくは30~40°Cで、最も好ましくは37°Cである。細胞懸濁液のpHは、通常細胞培養に用いられるpHであれば特に制限ないが、細胞の生存率の観点から、pH6.0~8.0が好ましく、さらに好ましくはpH6.5~7.5である。細胞集合体培養用基材と細胞懸濁液とを接触させる方法としては、細胞集合体培養用基材に細胞懸濁液を加える方法及び細胞懸濁液中に細胞集合体培養用基材を浸す方法が挙げられる。工程2において、培養温度は、細胞の生存率の観点から、25~45°Cが好ましく、さらに好ましくは30~40°Cで、最も好ましくは37°Cである。培養時間は、細胞の生存率の観点から、1~10日間が好ましく、さらに好ましくは3~7日間である。培養容器がU底プレートである場合、細胞集合体形成性の観点から、静置培養することが好ましい。培養容器が平底プレート、シャーレ、T-フラスコ、ローラーボトルである場合、細胞集合体形成性の観点から、旋回培養することが好ましい。旋回培養の場合、攪拌の回転数は、細胞の生存率細胞集合体形成率の観点から、30~120rpmが好ましく、さらに好ましくは60~80rpmである。以下、実施例及び比較例により本発明をさらに説明するが、本発明はこれらに限定されるものではない。以下、特に定めない限り、は重量、部は重量部を示す。<実施例1>1ポリペプチドP1の作製特表平3-502935号公報中の実施例記載の方法に準じて、遺伝子組換え大腸菌により製造し、カラムクロマトグラフィーにて精製した、GlyValGlyValPro配列1が4回繰り返した配列に、GlyLysGlyValPro配列361個が化学結合し、さらにGlyValGlyValPro配列1が3回繰り返した配列が化学結合し、さらにGlyAlaGlyAlaGlySer配列14が2回繰り返した配列が化学結合したアミノ酸ブロックL-1が8回繰り返し化学結合したMn35,164の配列75のポリペプチドP1を得た。2細胞集合体培養用基材[PB1]の作製ポリペプチドP11mgを脱イオン水1mLに溶解し、さらに、0.02Mリン酸緩衝液pH7.2、純度99.5重量塩化ナトリウムを0.85重量含有するPBSで希釈して、ポリペプチドP1溶液A1~A4{溶液A1~A4中のポリペプチドP1の濃度μg/mL;A1:0.01、A2:1、A3:10、A4:100}を作製した。この溶液A1~A4を96穴のポリスチレンプレート日本ベクトンディッキンソン株式会社中の8穴ずつにそれぞれ50μL/穴で投入し、室温約25°Cで2時間放置した。アスピレーターを用いて溶媒を除去した後、生理食塩水0.9重量/容量塩化ナトリウム水溶液100μL/穴で2回洗浄し、さらに脱イオン水100μL/穴で洗浄して、基材の表面にポリペプチドP1を有する細胞集合体培養用基材[PB1]コーティング量が異なるPB1-1~PB1-4を得た。<実施例2>1ポリペプチドP2の作製実施例1と同様にして、上記アミノ酸ブロックL-1が17回繰り返し化学結合したMn76,581の配列76のポリペプチドP2を作製した。2細胞集合体培養用基材[PB2]の作製ポリペプチドP1をポリペプチドP2に変更したこと以外同様にして、基材の表面にポリペプチドP2を有する細胞集合体培養用基材[PB2]コーティング量が異なるPB2-1~PB2-4を得た。<実施例3>1ポリペプチドP3の作製実施例1と同様にして、GlyValGlyValPro配列1が4回繰り返した配列に、GlyLysGlyValPro配列361個が化学結合し、さらにGlyValGlyValPro配列1が3回繰り返した配列が化学結合し、GlyAlaGlyAlaGlySer配列14が4回繰り返した配列が化学結合したアミノ酸ブロックL-2が7回繰り返し化学結合したMn35,863の配列77のポリペプチドP3を作製した。2細胞集合体培養用基材[PB3]の作製ポリペプチドP1をポリペプチドP3に変更したこと以外同様にして、基材の表面にポリペプチドP3を有する細胞集合体培養用基材[PB3]コーティング量が異なるPB3-1~PB3-4を得た。<実施例4>1ポリペプチドP4の作製実施例1と同様にして、上記アミノ酸ブロックL-2が13回繰り返し化学結合したMn69,772の配列78のポリペプチドP4を作製した。2細胞集合体培養用基材[PB4]の作製ポリペプチドP1をポリペプチドP4に変更したこと以外同様にして、基材の表面にポリペプチドP4を有する細胞集合体培養用基材[PB4]コーティング量が異なるPB4-1~PB4-4を得た。<実施例5>1ポリペプチドP5の作製実施例1と同様にして、GlyAlaGlyAlaGlySer配列14が2回繰り返した配列に、GlyValGlyValPro配列1が4回繰り返した配列が化学結合し、GlyLysGlyValPro配列36を結合し、さらにGlyValGlyValPro配列1が11回繰り返した配列が化学結合し、さらにGlyAlaGlyAlaGlySer配列14が2回繰り返した配列が化学結合したアミノ酸ブロックL-3が8回繰り返し化学結合したMn71,445の配列79のポリペプチドP5を作製した。2細胞集合体培養用基材[PB5]の作製ポリペプチドP1をポリペプチドP5に変更したこと以外同様にして、基材の表面にポリペプチドP5を有する細胞集合体培養用基材[PB5]コーティング量が異なるPB5-1~PB5-4を得た。<実施例6>1ポリペプチドP6の作製実施例1と同様にして、GlyAlaGlyAlaGlySer配列14が2回繰り返した配列に、GlyValGlyValPro配列1が4回繰り返した配列が化学結合し、GlyLysGlyValPro配列36を結合し、さらにGlyValGlyValPro配列1が11回繰り返した配列が化学結合し、さらにGlyAlaGlyAlaGlySer配列14が4回繰り返した配列が化学結合したアミノ酸ブロックL-4が6回繰り返し化学結合したMn64,694の配列80のポリペプチドP6を作製した。2細胞集合体培養用基材[PB6]の作製ポリペプチドP1をポリペプチドP6に変更したこと以外同様にして、基材の表面にポリペプチドP6を有する細胞集合体培養用基材[PB6]コーティング量が異なるPB6-1~PB6-4を得た。<比較例1>ポリペプチドP1をポリビニルアルコール以下、PVAと略記する日本塩ビポバール社製、品名:JP-18に変更したこと以外、実施例1と同様にして、基材の表面にポリビニルアルコールを有する比較用の細胞集合体培養用基材[PB7]コーティング量が異なるPB7-1~PB7-4を得た。<比較例2>ポリペプチドP1をアガロースナカライテスク社製、品名:アガロース-REに変更したこと以外、実施例1と同様にして、基材の表面にアガロースを有する比較用の細胞集合体培養用基材[PB8]コーティング量が異なるPB8-1~PB8-4を得た。<比較例3>ポリペプチドP1をフィブロネクチン和光社製、品名:Fibronectin,frombovineplasmaに変更したこと以外、実施例1と同様にして、基材の表面にフィブロネクチンを有する比較用の細胞集合体培養用基材[PB9]コーティング量が異なるPB9-1~PB9-4を得た。<比較例4>細胞集合体培養用基材として市販されている、基材の表面に2-メタクリロイルオキシエチルホスホリルコリン基含有ポリマー以下、MPCと略記するを有するLIPIDURETM-coat日油株式会社製を細胞集合体培養用基材[PB10]として用いた。<比較例5>細胞集合体培養用基材として市販されている、基材の表面に光架橋超親水性ポリマーを有するPrimeSurfaceTM住友ベークライト株式会社製を細胞集合体培養用基材[PB11]として用いた。<細胞集合体培養用基材PB1~PB6及びPB9のコーティング量の測定>MicroBCATMproteinassaykitTHERMOFisherScientific社製に付属のReagentA溶液:ReagentB溶液:ReagentC溶液=25:24:1の混合液Cを得た。細胞集合体培養用基材コーティング量の異なるPB1-1~PB6-4とPB9-1~PB9-4の各ウェルに混合液Cを100μL加え、37°Cで2時間静置した。2時間後に、ビシンコニン酸BCAとCuとからなるキレートの生成量を、450nm対照波長630nmの吸光度でプレートリーダーコロナ電気株式会社製MTP-32を用いて測定し、あらかじめウシ血清アルブミンにより作成した検量線からコーティング量を得た。これらの結果を表1に示すこれらの結果は各々8穴分の平均データである。。<細胞集合体培養用基材PB7のコーティング量の測定>コーティングプレート片1gを蒸留水50mlに加え、60°Cで30分間加熱した。加熱後、ろ液を回収した。また、ろ過後のプレート片を0.1NHCl水50mlで1時間放置し、熱水200mlで洗いこみながらろ過した。それぞれのろ液を合わせて500mlにフィルアップした。フィルアップ後、20mlを50mlメスフラスコに加えて、ホウ酸溶液ホウ酸40g/lを15ml添加した。その後、I2溶液KI25gI212.5g/1Lを3ml加え、50mlにフィルアップした。室温で、690nmの吸光度MolecularDevices社製、VERSAMAXplatereaderからPVAの濃度を算出した。これらの結果を表1に示すこれらの結果は各々8穴分の平均データである。。<細胞集合体培養用基材PB8のコーティング量の測定>0.5M2-シアノアセタミド水溶液50μl及びホウ酸―リン酸緩衝液0.3Mホウ砂と0.3Mリン酸一水素カリウムを混合し、pH8.0に調整したもの250μl加え、混合物をよく振り混ぜた後、98°Cで30分間加熱した。室温で、331nmで励起した383nmでの蛍光を測定MolecularDevices社製、SPECTRAMAXGEMINIEMし、アガロース濃度を算出した。これらの結果を表1に示すこれらの結果は各々8穴分の平均データである。。<評価:C3H10T1/2細胞マウス間葉系細胞の細胞接着率>血清を含まないDMEM培地ICNBiomedicals社製を50μL/穴で[PB1]~[PB9]にそれぞれ添加し、37°Cインキュベーター内に1時間保存した。1時間後、C3H10T1/2細胞大日本製薬株式会社製を1万cells/50μL/穴で添加し、37°C、二酸化炭素濃度5容量のインキュベーター中にて2時間放置して培養した。培養終了後、アスピレーターを用いて培地を除去し、生理食塩水を細胞に直接当たらないように注意しながら100μL/穴で添加し、アスピレーターを用いて生理食塩水を除去した。次にPBSを50μL/穴で添加し、さらにテトラカラーワン生化学工業株式会社を10μL/穴で添加して、37°C、二酸化炭素濃度5容量のインキュベーター中に4時間放置した。4時間後に、ホルマザン生成量Xを、450nm参照波長630nmの吸光度でプレートリーダーコロナ電気株式会社製MTP-32を用いて測定した。比較例3の基材[PB9-4]については、播種したすべての細胞が接着したことを顕微鏡観察で確認したので、これを細胞接着率が100であるとして、ホルマザン生成量X0を測定した。X及びX0を下記式に当てはめ、細胞接着率を算出した。細胞接着率=X/X0×100細胞接着率は、当該吸光度の高さに比例する。これらの結果を表1に示すこれらの結果は各々8穴分の平均データである。。また、得られた結果について、縦軸をC3H10T1/2細胞の細胞接着率、横軸をコーティング量μg/cm2としてプロットし、グラフを作成した図1。<評価:MC3T3-E1細胞マウス骨芽細胞の細胞接着率>血清を含まないDMEMICNBiomedicals社製を50μL/穴で[PB1]~[PB9]に添加し、37°Cインキュベーター内に1時間保存した。1時間後、MC3T3-E1細胞大日本製薬株式会社製を1万cells/50μL/穴で添加し、37°C、二酸化炭素濃度5容量のインキュベーター中にて2時間放置して培養した。培養終了後、アスピレーターを用いて培地を除去し、生理食塩水を細胞に直接当たらないように注意しながら100μL/穴で添加し、アスピレーターを用いて生理食塩水を除去した。次にPBSを50μL/穴で添加し、さらにテトラカラーワン生化学工業株式会社を10μL/穴で添加して、37°C、二酸化炭素濃度5容量のインキュベーター中に4時間放置した。4時間後に、ホルマザン生成量Xを、450nm参照波長630nmの吸光度でプレートリーダーコロナ電気株式会社製MTP-32を用いて測定した。比較例3の基材[PB9-4]については、播種したすべての細胞が接着したことを顕微鏡観察で確認したので、これを細胞接着率が100であるとして、ホルマザン生成量X0を測定した。X及びX0を下記式に当てはめ、細胞接着率を算出した。細胞接着率=X/X0×100細胞接着率は、当該吸光度の高さに比例する。これらの結果を表1に示すこれらの結果は各々8穴分の平均データである。。また、得られた結果について、縦軸をMC3T3-E1細胞の細胞接着率、横軸をコーティング量μg/cm2としてプロットし、グラフを作成した図2。<評価:MC3T3-E1細胞マウス骨芽細胞のアポトーシス活性>実施例1~6の[PB1-3]、[PB2-3]、[PB3-3]、[PB4-3]、[PB5-3]、[PB6-3]、比較例1~3の[PB7-3]、[PB8-3]及び[PB9-3]、比較例4~5の[PB10]、[PB11]それぞれ3穴ずつに、血清を含まないDMEM培地ICNBiomedicals社製を50μL/穴で添加し、37°Cインキュベーター内に1時間保存した。1時間後、MC3T3-E1細胞大日本製薬株式会社製を1万cells/50μL/穴で添加し、37°C、二酸化炭素濃度5容量のインキュベーター中にて24時間放置して培養した。培養終了後、Caspase-GloTM3/7AssayPromega社製を用いて、Caspase活性を測定した。Caspase反応液100μL/穴で添加し、室温で3時間放置した。3時間後、蛍光強度は、ルミネッセンスプレートリーダーMicroLumatPlusLB96ベルトールドテクノロジー社製を用いて測定した。完全に非接着性である[PB7-3]の活性を100として、Caspase活性を相対値で表した。これらの結果を表2に示すこれらの結果は各々3穴分の平均データである。。<実施例7>細胞懸濁液100μl105cells/mlを細胞集合体培養用基材[PB1-3]に加えた。37°C、5CO2下で7日間静置培養し、細胞集合体を得た。<実施例8>細胞懸濁液100μl105cells/mlを細胞集合体培養用基材[PB2-3]に加えた。37°C、5CO2下で7日間静置培養し、細胞集合体を得た。<実施例9>細胞懸濁液100μl105cells/mlを細胞集合体培養用基材[PB3-3]に加えた。37°C、5CO2下で7日間静置培養し、細胞集合体を得た。<実施例10>細胞懸濁液100μl105cells/mlを細胞集合体培養用基材[PB4-3]に加えた。37°C、5CO2下で7日間静置培養し、細胞集合体を得た。<実施例11>細胞懸濁液100μl105cells/mlを細胞集合体培養用基材[PB5-3]に加えた。37°C、5CO2下で7日間静置培養し、細胞集合体を得た。<実施例12>細胞懸濁液100μl105cells/mlを細胞集合体培養用基材[PB6-3]に加えた。37°C、5CO2下で7日間静置培養し、細胞集合体を得た。<比較例6>細胞懸濁液100μl105cells/mlを細胞集合体培養用基材[PB7-3]に加えた。37°C、5CO2下で7日間静置培養し、細胞集合体を得た。<比較例7>細胞懸濁液100μl105cells/mlを細胞集合体培養用基材[PB8-3]に加えた。37°C、5CO2下で7日間静置培養し、細胞集合体を得た。<比較例8>細胞懸濁液100μl105cells/mlを細胞集合体培養用基材[PB10]に加えた。37°C、5CO2下で7日間静置培養し、細胞集合体を得た。<比較例9>細胞懸濁液100μl105cells/mlを細胞集合体培養用基材[PB11]に加えた。37°C、5CO2下で7日間静置培養し、細胞集合体を得た。<比較例10>細胞懸濁液100μl105cells/mlを細胞集合体培養用基材[PB9-3]に加えた。37°C、5CO2下で7日間静置培養したが、細胞集合体は得られなかった。<細胞集合体の活性評価;ミトコンドリア活性>7日間培養後、細胞集合体にテトラカラーワン生化学工業株式会社を10μL/穴で添加して、37°C、二酸化炭素濃度5容量のインキュベーター中に4時間放置した。4時間後に、ホルマザン生成量を、450nm対照波長630nmの吸光度でプレートリーダーコロナ電気株式会社製MTP-32を用いて測定した。生細胞数は細胞集合体に核放出溶液0.2クリスタルバイオレット、0.2Mクエン酸3ナトリウム、2Tween20を加え、1時間置くことで生細胞の核を細胞から放出させ、血球計数盤を用いて核数を測定した。ホルマザン生成量を生細胞数で標準化し、細胞集合体のミトコンドリア活性とした。得られたミトコンドリア活性は、細胞接着培養用プレートCorning社製、CostarTMを用いて培養した細胞のミトコンドリア活性を100とした相対値で表した。これらの結果を表3に示す。表1の結果から、基材の表面にフィブロネクチンを有する比較例3の基材は、フィブロネクチンによるコーティング量が増えるにつれて細胞接着率が高くなることが分かる。一方、本発明の細胞集合体培養用基材や比較例1~2の細胞集合体培養用基材は、コーティング量が増えるにつれて細胞接着率が低くなり、細胞集合体培養に適した低細胞接着率とすることができることが分かる。また、表2の結果から、比較例1~2及び4~5の細胞集合体培養用基材と比較して、本発明の細胞集合体培養用基材はアポトーシス活性が17~35と低く、細胞集合体培養に適していることが分かる。さらに、表3の結果から、本発明の細胞集合体培養用基材を用いることで、高いミトコンドリア活性を保持できることを確認した。細胞のエネルギー代謝はミトコンドリアにより行われており、ミトコンドリア活性が高いことから、活性の高い細胞集合体が得られたことがわかる。以上のことから、本発明の細胞集合体培養用基材は、細胞接着率が低いにもかかわらず、アポトーシス活性が低く、本発明の細胞集合体培養用基材を用いれば、活性の高い細胞集合体を得ることができることが分かる。"