"イネにおける縞葉枯病に対する抵抗性又は感受性を判定するための方法であって、被検イネが有する、Stvb遺伝子座の下記a~cからなる群から選択される少なくとも一の多型を検出することを特徴とする方法a配列番号:5に記載の塩基配列の468~528位からなる領域、又は該領域に対応する領域の繰り返しの有無b配列番号:5に記載の塩基配列の401位、又は該部位に対応する部位における1塩基多型c配列番号:5に記載の塩基配列の753位、又は該部位に対応する部位における1塩基多型。イネにおける縞葉枯病に対する抵抗性がModan由来であるか否かを判定するための方法であって、請求項1に記載の方法によって、縞葉枯病に対する抵抗性を有すると判定されたイネにおいて、当該イネが有するStvb遺伝子座の下記dの多型を検出することを特徴とする方法d配列番号:14に記載の塩基配列の444~644位からなる領域、又は該領域に対応する領域における挿入又は欠失。請求項1又は2に記載の方法に用いられるための試薬であって、Stvb遺伝子座の塩基配列に相補的な連続する少なくとも15塩基の塩基配列を含み、下記i又はiiに記載のオリゴヌクレオチドである試薬i下記a~dのうちのいずれか一の多型を挟み込むように設計された一対のオリゴヌクレオチドii下記a~dのうちのいずれか一の多型を含む塩基配列にハイブリダイズするオリゴヌクレオチドa配列番号:5に記載の塩基配列の468~528位に対応する領域、又は該領域に対応する領域の繰り返しの有無b配列番号:5に記載の塩基配列の401位に対応する部位、又は該部位に対応する部位における1塩基多型c配列番号:5に記載の塩基配列の753位に対応する部位、又は該部位に対応する部位における1塩基多型d配列番号:14に記載の塩基配列の444~644位からなる領域、又は該領域に対応する領域における挿入又は欠失。本発明は、前記従来技術の有する課題に鑑みてなされたものであり、その目的は、イネにおける縞葉枯病に対する抵抗性又は感受性を判定するための方法であって、労力、時間及び技術を要する生物検定に依らず、かつ、特定の抵抗性遺伝子源を有するイネのみに適用が限定されない方法を提供することにある。さらなる本発明の目的は、上記方法により縞葉枯病に対する抵抗性を有すると判定されたイネにおいて、その抵抗性がModan由来であるか否かを判定する方法を提供することにある。また、本発明は、これら方法に用いられる試薬を提供することをも目的とする。本発明者らは、前記目的を達成すべく、先ず、Modan由来縞葉枯病抵抗性品種と、縞葉枯病感受性品種との塩基配列の比較を行い、Stvb-i遺伝子領域にPCR用プライマーを数kb毎に設計した表1及び図2参照。そして、Modan由来抵抗性品種及び感受性品種のみならず、Modan以外のインド型品種に由来する抵抗性品種、日本陸稲の抵抗性遺伝子StvbStvb-iの対立遺伝子を保有する抵抗性品種、Cゲノム野生種であるO.officinalisが持つ抵抗性遺伝子を保有する抵抗性品種について、これらのプライマーを用いたPCRによって増幅される断片の長さ及び該断片の塩基配列について検討を行った。その結果、ST71プライマーセットによって増幅された断片に関して、抵抗性品種においては配列番号:13に記載の61塩基からなるリピート61bpリピートが1つ、感受性品種においては2つ存在しているため、当該断片長を比較することにより、特定の抵抗性遺伝子源を有するイネに限定されず広く、縞葉枯病に対する抵抗性又は感受性を判定できることを見出した。また、感受性品種である日本晴のST71増幅断片を含む領域の塩基配列配列番号:5に記載の塩基配列の401位又は該部位に対応する部位がアデニンAであるのに対し、抵抗性品種においてはグアニンGであること、及び、感受性品種においては、配列番号:5に記載の塩基配列の753位又は該部位に対応する部位がチミンTであるのに対し、抵抗性品種においてはシトシンCであることを明らかにした。そして、ST71プライマーセットによって増幅された断片における、これら1塩基多型を検出することによっても、同様に、イネにおける縞葉枯病に対する抵抗性又は感受性を判定できることを見出した。さらに、本発明者らは、ST64プライマーセットを用いたPCR分析を組み合わせることにより、前記多型の検出により見出された縞葉枯病に対する抵抗性が、Modanに由来するか否かを判定できることをも見出し、本発明を完成するに至った。すなわち、本発明は、被検イネが有するStvb遺伝子座の多型を検出することにより、縞葉枯病に対する抵抗性又は感受性を判定する方法、該方法によって縞葉枯病に対する抵抗性を有すると判定されたイネにおいて、その抵抗性がModan由来であるか否かを判定する方法、及び、これらの方法に用いられるプライマー等の試薬に関し、より詳しくは、以下の発明を提供するものである。1イネにおける縞葉枯病に対する抵抗性又は感受性を判定するための方法であって、被検イネが有する、Stvb遺伝子座の下記a~cからなる群から選択される少なくとも一の多型を検出することを特徴とする方法a配列番号:5に記載の塩基配列の468~528位からなる領域、又は該領域に対応する領域の繰り返しの有無b配列番号:5に記載の塩基配列の401位、又は該部位に対応する部位における1塩基多型c配列番号:5に記載の塩基配列の753位、又は該部位に対応する部位における1塩基多型。2イネにおける縞葉枯病に対する抵抗性がModan由来であるか否かを判定するための方法であって、1に記載の方法によって、縞葉枯病に対する抵抗性を有すると判定されたイネにおいて、当該イネが有するStvb遺伝子座の下記dの多型を検出することを特徴とする方法d配列番号:14に記載の塩基配列の444~644位からなる領域、又は該領域に対応する領域における挿入又は欠失。31又は2に記載の方法に用いられるための試薬であって、Stvb遺伝子座の塩基配列に相補的な連続する少なくとも15塩基の塩基配列を含み、下記i又はiiに記載のオリゴヌクレオチドである試薬i下記a~dのうちのいずれか一の多型を挟み込むように設計された一対のオリゴヌクレオチドii下記a~dのうちのいずれか一の多型を含む塩基配列にハイブリダイズするオリゴヌクレオチドa配列番号:5に記載の塩基配列の468~528位に対応する領域、又は該領域に対応する領域の繰り返しの有無b配列番号:5に記載の塩基配列の401位に対応する部位、又は該部位に対応する部位における1塩基多型c配列番号:5に記載の塩基配列の753位に対応する部位、又は該部位に対応する部位における1塩基多型d配列番号:14に記載の塩基配列の444~644位からなる領域、又は該領域に対応する領域における挿入又は欠失。本発明によれば、労力、時間及び技術を要する生物検定に依らず、かつ、特定の抵抗性遺伝子源を有するイネに適用範囲が限定されずに、イネにおける縞葉枯病に対する抵抗性又は感受性を判定することが可能となる。<イネにおける縞葉枯病に対する抵抗性又は感受性を判定するための方法>本発明は、イネにおける縞葉枯病に対する抵抗性又は感受性を判定するための方法であって、被検イネが有する、Stvb遺伝子座の下記a~cからなる群から選択される少なくとも一の多型を検出することを特徴とする方法を提供する。a配列番号:5に記載の塩基配列の468~528位からなる領域、又は該領域に対応する領域の繰り返しの有無b配列番号:5に記載の塩基配列の401位、又は該部位に対応する部位における1塩基多型c配列番号:5に記載の塩基配列の753位、又は該部位に対応する部位における1塩基多型。本発明の方法を適用するイネとしては特に制限はない。後述の実施例において示す通り、日本型ジャポニカ種、Oryzasativasubsp.japonica、インド型インディカ種、Oryzasativasubsp.indica等を問わず、また水稲品種、陸稲品種等を問わず、さらに主食用、飼料用等を問わず、広く本発明の方法を適用することができる。本発明において縞葉枯病とは、イネ縞葉枯ウイルスRSVの感染によりイネに生じる病気である。この病気は、主に、ヒメトビウンカLaodelphaxstriatellusが、摂食時に口吻から吐き出す唾液を通して、ウイルス保毒ウンカ体内で増殖しているRSVが、イネ植物体内へ送り込まれ、接種されることにより生ずる。この病気に感染したイネ葉には、黄緑から黄白の縞状、細かい絣状の退色斑紋が生じ、やがて極めて薄い褐色や灰白色の条斑に変色する。また、幼苗期生育初期に感染発病すると、新葉は展開しないままこより状に徒長し、やがて垂れ下がり、そのまま弧を描いたように、いわゆる幽霊症状を呈して枯死する。これらの発病株は早期に枯死するものが多い。退色斑紋の少ない、病徴の軽い株では、株全体が萎縮することもある。生育後期の発病では、穂が形成されない、されても未成熟のまま枯れるなどの症状が見られる。本発明における縞葉枯病に対する感受性とは、イネがRSVに感染する性質、すなわち、RSVがイネ植物体内に侵入し、定着することにより、当該イネにおいて前記症状等が生じる性質を意味し、例えば、非特許文献5において示されているような、RSVを保毒するヒメトビウンカを用いた幼苗検定法において、RSVを感染することにより生じる病徴型をA枯死からD軽微な病徴までの6段階に分類し図4参照、各病徴型を示す個体数から下記式によって発病指数を算出し、感受性比較品種杜稲の発病指数を100としたときの発病指数比が60を越える性質が挙げられる。発病指数=100×A苗数80×B苗数60×Bt苗数40×Cr苗数20×C苗数5×D苗数/供試個体数。また、本発明において縞葉枯病に対する抵抗性とは、RSVの感染に対するイネの抵抗性、すなわち、RSVがイネ植物体内に侵入しても定着せず、また定着しても、当該イネにおいて前記症状等が生じにくい性質を意味し、例えば、前記幼苗検定法において、前記発病指数比が60以下である性質が挙げられる。この抵抗性により、イネにおけるRSVの感染症状の発症、又は、発生した症状の程度が抑制される。本発明におけるStvb遺伝子座とは、Stvb遺伝子、及びその対立遺伝子例えば、Stvb-i遺伝子が座乗しているイネの第11染色体長腕領域のことを意味する。多型とは、遺伝学的には母集団中1以上の頻度で存在している塩基変化と一般的に定義される。しかしながら、本発明における多型は、この定義に制限されず、1未満の塩基の変化も多型に含む。また、本発明の方法において検出の対象となる多型は、一塩基多型、数十塩基が繰り返して存在している又は繰り返して存在していない多型及び数十塩基が欠失又は挿入している多型であり、より具体的には、下記a~cの多型である。a配列番号:5に記載の塩基配列の468~528位からなる領域、又は該領域に対応する領域の繰り返しの有無b配列番号:5に記載の塩基配列の401位、又は該部位に対応する部位における1塩基多型c配列番号:5に記載の塩基配列の753位、又は該部位に対応する部位における1塩基多型。配列番号:5に記載の塩基配列は、縞葉枯病感受性品種である日本晴のStvb遺伝子座に由来する塩基配列である。配列番号:5に記載の塩基配列の468~528位からなる領域は、検出対象となる繰り返し配列からなる多型の領域である。この領域に対応する領域とは、日本晴の繰り返し配列からなる多型の領域に対応する他品種の領域を意味する。配列番号:5に記載の塩基配列の401位及び753位は、検出対象となる1塩基多型の部位である。また、この部位に対応する部位とは、日本晴の1塩基多型の部位に対応する他品種の部位を意味する。対応する領域または対応する部位であるか否かは、後述の実施例において示す通り、例えば、DNA解析ソフトウェアGENETYX-MAC、Sequencher等やBLASThttp://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgiを利用し、他品種の塩基配列を、日本晴の塩基配列配列番号:5に記載の塩基配列と整列させた際に、日本晴の塩基配列の468~528位からなる領域、401位、又は753位と同列になるか否かにより判定することができる。以下、本発明の方法の好ましい態様を記載するが、本発明の方法はそれらの方法に限定されるものではない。本発明の方法における多型の検出においては、まず、被検イネからDNA試料を調製する。DNA試料は、例えば被検イネの組織例えば、玄米から調製することができる。イネの組織からゲノムDNAを抽出する方法としては特に制限はなく、公知の手法を適宜選択して用いることができ、例えば、SDSフェノール法尿素を含む溶液又はエタノール中に保存した組織を、タンパク質分解酵素proteinaseK、界面活性剤SDS、及びフェノールで該組織のタンパク質を変性させ、エタノールで該組織からDNAを沈殿させ抽出する方法、CTAB法高濃度のCTABセチルメチルアンモニウムブロマイド、Cetyltrimethylammoniumbromideを含む溶液中に組織を保存し、該組織のタンパク質と多糖類とを不容化して沈殿除去し、エタノールで該組織からDNAを沈殿させ抽出する方法、アルカリ処理法アルカリ溶液を用いてDNAを抽出する簡易方法が挙げられる。前記aに記載の多型の検出は、かかる多型を含む領域を、後述のStvb遺伝子座の多型を挟み込むように設計された一対のオリゴヌクレオチドを用いて、前記ゲノムDNAを鋳型としたPCR等によって増幅し、得られた増幅産物の分子量を対照の増幅産物の分子量と比較することにより実施することができる。対照としては、例えば、縞葉枯病に対して抵抗性を示すことが知られているイネ、若しくは、縞葉枯病に対して感受性を示すことが知られているイネ、又は、Modan由来の縞葉枯病に対する抵抗性を示すことが知られているイネ等から調製されたゲノムDNAが挙げられる。増幅産物の分子量を比較する方法としては、後述の実施例において示すような、検出する分子量に適したアガロースゲルを用いた電気泳動にて得られた増幅産物を分画した後、該増幅産物をエチジウムブロマイド等にて染色することにより検出する方法や、得られた増幅産物を質量分析機MALDI-TOF/MS等にかけ質量測定を行う方法が挙げられる。また、上記多型の検出は、Stvb遺伝子座の多型を含むDNAを単離し、単離したDNAの塩基配列を決定することにより実施することができる。該DNAの単離は、例えば、後述のStvb遺伝子座の多型を挟み込むように設計された一対のオリゴヌクレオチドを用いて、ゲノムDNAを鋳型としたPCR等によって行うことができる。単離したDNAの塩基配列の決定は、マキサムギルバート法やサンガー法等、当業者に公知の方法で行うことができる。上記多型を検出する別の方法としては、PCR-SSPPCR-配列特異的プライマー法が挙げられる。前記aに記載の多型を検出する場合には、例えば、図5に示すように、後述の一対のオリゴヌクレオチドのうちの片方のオリゴヌクレオチドを前記繰り返し配列内に設計し、もう片方のオリゴヌクレオチドを前記繰り返し配列の外に設計する。こうして設計された一対のオリゴヌクレオチドを用いたPCRにより、前記繰り返し配列を1個のみ有している被検イネに由来するゲノムDNAを鋳型にした場合に得られる増幅産物は、1断片であるのに対し、前記繰り返し配列を2個有している被検イネに由来するゲノムDNAを鋳型にした場合に得られる増幅産物は、前記断片と同じ鎖長の断片と、前記断片よりも長い鎖長の断片となるため、かかる一対のオリゴヌクレオチドを利用することにより、多型を検出することができる。また、例えば図6に示すように、一対のオリゴヌクレオチドを前記繰り返し配列内に設計する。こうして設計された一対のオリゴヌクレオチドを用いたPCRにより、前記繰り返し配列を1個のみ有している被検イネに由来するゲノムDNAを鋳型にした場合には増幅産物が得られないのに対し、前記繰り返し配列を2個有している被検イネに由来するゲノムDNAを鋳型にした場合には増幅産物が得られるため、かかる一対のオリゴヌクレオチドを利用することにより、多型を検出することができる。前記b又はcに記載の1塩基多型をPCR-SSP法により検出する場合には、後述の一対のオリゴヌクレオチドのうちの片方のオリゴヌクレオチドの3’末端が前記部位の特定の塩基種に相補的な塩基種になるようように設計する。そして、このように設計された一対のオリゴヌクレオチドを用いたPCRにより増幅されるのは、前記部位の特定の塩基種を有する被検イネに由来するゲノムDNAを鋳型にした場合に限られ、前記部位が異なる塩基種である被検イネに由来するゲノムDNAを鋳型にした場合は増幅されないため、かかる一対のオリゴヌクレオチドを利用することにより、1塩基多型を検出することができる。上記多型を検出するためのさらに別の方法としては、PCR-SSCPPCR-一本鎖高次構造多型法が挙げられる。すなわち、後述の一対のオリゴヌクレオチドを用いたPCRにより増幅して得られた2本鎖DNAを熱やアルカリ等で処理することにより変性させ、1本鎖DNAにした後、変性剤を含まないポリアクリルアミドゲル電気泳動にかけると、ゲル中で1本鎖DNAは分子内相互作用により折り畳まれ、高次構造を形成することになる。そして、その折り畳まれ構造の相互作用は、塩基種の相違、特定の塩基配列の繰り返し数の相違、塩基配列の挿入又は欠失により変化するため、分離した当該1本鎖DNAを銀染色やラジオアイソトープにより検出し、当該1本鎖DNAのゲル上での移動度を対照のそれと比較することにより、本発明にかかる多型を検出することができる。上記多型を検出するさらに別の方法としては、インターカレーターを利用する方法が挙げられる。この方法においては、先ず、被検イネから前述の通りDNA試料を調製する。次いで、DNA二重鎖間に挿入されると蛍光を発するインターカレーターを含む反応系において、前記DNA試料を鋳型として、本発明にかかる多型を含む塩基配列を増幅する。そして、前記反応系の温度を変化させ、前記インターカレーターが発する蛍光の強度の変動を検出し、検出した前記温度の変化に伴う前記蛍光の強度の変動を対照と比較する。このような方法としては、HRMhighresolutionmelting、高分解融解曲線解析法が挙げられる。上記多型を検出するさらに別の方法としては、多型を含む塩基配列にハイブリダイズするオリゴヌクレオチドプローブを利用する方法が挙げられる。この方法においては、まず、被検イネから前述の通りDNA試料を調製する。一方で、多型を含む塩基配列にハイブリダイズし、レポーター蛍光色素及びクエンチャー蛍光色素が標識されたオリゴヌクレオチドプローブを調製する。そして、前記DNA試料に、前記オリゴヌクレオチドプローブをハイブリダイズさせ、さらに前記オリゴヌクレオチドプローブがハイブリダイズした前記DNA試料を鋳型として、多型を含む塩基配列を増幅する。そして、前記増幅に伴うオリゴヌクレオチドプローブの分解により、前記レポーター蛍光色素が発する蛍光を検出し、次いで検出した前記蛍光を対照と比較する。このような方法としては、ダブルダイプローブ法、いわゆるTaqMan登録商標プローブ法が挙げられる。以上、本発明の方法の実施形態について説明したが、本発明の方法は上記実施形態に限定されるものではない。例えば、制限酵素断片長多型RFLPを利用した方法PCR-RFLP法、変性剤濃度勾配ゲル電気泳動法DGGE法、インベーダーInvader法、パイロシークエンシングPyrosequencing法、シングルヌクレオチドプライマー伸長SNuPE法、アレル特異的オリゴヌクレオチドASOハイブリダイゼーション法、DNAアレイ法といった、多型を検出するための公知の技術も、本発明において利用しうる。本発明の方法により、前記aに記載の多型を検出した場合において、配列番号:5に記載の塩基配列の468~528位からなる領域、又は該領域に対応する領域が繰り返して存在していれば、その被検イネは縞葉枯病に対して感受性を示すイネであると判定することができる。一方、配列番号:5に記載の塩基配列の468~528位からなる領域、又は該領域に対応する領域が繰り返して存在していなければ、その被検イネは縞葉枯病に対して抵抗性を示すイネであると判定することができる。この多型を検出する場合には、必ずしも多型を含む領域の塩基配列を決定する必要はなく、多型を含む領域を増幅して得られるDNA断片の分子量例えば、増幅断片の長さを指標に多型を検出することができるため、簡便に縞葉枯病に対する抵抗性又は感受性を判定することができる。また、前記bに記載の多型を検出した場合において、配列番号:5に記載の塩基配列の401位、又は該部位に対応する部位がアデニンであれば、その被検イネは縞葉枯病に対して感受性を示すイネであると判定することができる。一方、配列番号:5に記載の401位、又は該部位に対応する部位がグアニンであれば、その被検イネは縞葉枯病に対して抵抗性を示すイネであると判定することができる。さらに、前記cに記載の多型を検出した場合において、配列番号:5に記載の塩基配列の753位、又は該部位に対応する部位がチミンであれば、その被検イネは縞葉枯病に対して感受性を示すイネであると判定することができる。一方、配列番号:5に記載の753位、又は該部位に対応する部位がシトシンであれば、その被検イネは縞葉枯病に対して抵抗性を示すイネであると判定することができる。このように、前記a~cに記載のいずれか一種の多型を検出することにより、本発明のイネにおける縞葉枯病に対する抵抗性又は感受性を判定することができる。かかる判定の正確性をより向上させるという観点から、前記a~cに記載の複数の多型を組み合わせて検出してもよい。<イネにおける縞葉枯病に対する抵抗性がModan由来であるか否かを判定する方法>また、本発明は、前記イネにおける縞葉枯病に対する抵抗性又は感受性を判定するための方法によって縞葉枯病に対する抵抗性を有すると判定された被検イネにおいて、当該イネが有するStvb遺伝子座の下記dの多型を検出することにより、当該イネにおける縞葉枯病に対する抵抗性がModan由来であるか否かを判定する方法を提供する。d配列番号:14に記載の塩基配列の444~644位からなる領域、又は該領域に対応する領域における挿入又は欠失。Modanは、パキスタン原産のインド型品種の一種であり、縞葉枯病に対する抵抗性遺伝子Stvb-iを有する品種である。配列番号:14に記載の塩基配列は、Modan由来の縞葉枯病抵抗性品種であるSt.No.1のStvb遺伝子座に由来する塩基配列である。配列番号:14に記載の塩基配列の444~644位からなる領域は、検出対象となる挿入/欠失多型を含む領域である。この領域に対応する領域とは、St.No.1の挿入/欠失多型の領域に対応する他品種の領域を意味する。対応する領域であるか否かは、後述の実施例において示す通り、例えば、DNA解析ソフトウェアGENETYX-MAC等やBLASThttp://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgiを利用し、他品種の塩基配列をSt.No.1の塩基配列配列番号:14に記載の塩基配列と整列させた際に、St.No.1の塩基配列の444~644位からなる領域と同列になるか否かにより判定することができる。当該方法におけるDNAの抽出並びに前記dに記載の多型の検出は、上記のaに記載の多型の場合と同様である。さらに、PCR-SSPに関しては、例えば、後述の一対のオリゴヌクレオチドのうちの片方のオリゴヌクレオチドを、挿入配列内に設計するか、または当該オリゴヌクレオチドの3’末端が挿入配列内にかかるように設計する。こうして設計された一対のオリゴヌクレオチドを用いたPCRにより増幅されるのは、当該挿入配列を有する被検イネに由来するゲノムDNAを鋳型にした場合に限られるため、かかる一対のオリゴヌクレオチドを利用することにより、挿入又は欠失を検出することができる。本発明の方法により、前記dに記載の多型を検出した場合において、配列番号:14に記載の塩基配列の444~644位からなる領域、又は該領域に対応する領域において、特徴的な挿入例えば、配列番号:14に記載の塩基配列の444~589位からなる塩基配列の挿入が認められれば、そのイネが示す縞葉枯病に対する抵抗性は、Modan由来であると判定することができる。一方、配列番号:14に記載の塩基配列の444~644位からなる領域、又は該領域に対応する領域において、特徴的な欠失例えば、配列番号:14に記載の塩基配列の444~589位からなる塩基配列の欠失が認められれば、そのイネが示す縞葉枯病に対する抵抗性は、Modan由来ではないと判定することができる。また、穂いもち抵抗性遺伝子Pb1は、Modanに由来するStvb-i遺伝子と連鎖することが知られているため、当該判定により、穂いもち抵抗性をも有する個体の選抜をも行うことができる。<本発明の方法に用いられるための試薬>さらに、本発明は、本発明の方法に用いられるための試薬であって、Stvb遺伝子座の塩基配列に相補的な連続する少なくとも15塩基の塩基配列を含むオリゴヌクレオチドを含む試薬を提供する。当該オリゴヌクレオチドには、オリゴヌクレオチドプライマー及びオリゴヌクレオチドプローブの双方が含まれる。当該オリゴヌクレオチドは、上記本発明の方法に使用し得る限り、Stvb遺伝子座の塩基配列に対して完全に相補的である必要はない。本発明のオリゴヌクレオチドの一つの好ましい態様は、本発明にかかる多型を挟み込むように設計された一対のオリゴヌクレオチドプライマーセットである。該オリゴヌクレオの長さは、通常15~100塩基であり、好ましくは17~30塩基である。なお、前述の通り、当該一対のオリゴヌクレオチドのうちのどちらか片方のオリゴヌクレオチドは、本発明にかかる多型の塩基配列の全部又は一部と相補的なものであってもよい。本発明の一対のオリゴヌクレオチドの好適な例としては、前記aに記載の多型を検出する場合には、配列番号:24及び25に記載の塩基配列からなる一対のオリゴヌクレオチドが挙げられる。また、前記dに記載の多型を検出する場合には、配列番号:22及び23に記載の塩基配列からなる一対のオリゴヌクレオチドが、本発明の一対のオリゴヌクレオチドの好適な例として挙げられる。本発明のオリゴヌクレオチドの他の好ましい態様は、本発明にかかる多型を含む塩基配列にハイブリダイズするオリゴヌクレオチドオリゴヌクレオチドプローブである。オリゴヌクレオチドプローブは、通常のハイブリダイゼーション条件下、好ましくはストリンジェントなハイブリダイゼーション条件下例えば、アニーリング温度を50°CとしたPCR反応において、本発明にかかる多型を含む塩基配列にハイブリダイズし、一方、他の領域のDNAとクロスハイブリダイゼーションを有意に生じないものが好ましい。このような特異的なハイブリダイズが可能であれば、該オリゴヌクレオチドプローブは、本発明にかかる多型を含む塩基配列に対し、完全に相補的である必要はない。また、本発明のオリゴヌクレオチドは、適宜、アイソトープ、蛍光色素、ビオチン等によって標識して用いてもよい。標識する方法としては、T4ポリヌクレオチドキナーゼを用いて、オリゴヌクレオチドの5’端を32Pでリン酸化することにより標識する方法、及びクレノウ酵素等のDNAポリメラーゼを用い、ランダムヘキサマーオリゴヌクレオチド等をプライマーとして32P等のアイソトープ、蛍光色素又はビオチン等によって標識された基質塩基を取り込ませる方法ランダムプライム法等を例示することができる。本発明のオリゴヌクレオチドは、例えば市販のオリゴヌクレオチド合成機により作製することができる。オリゴヌクレオチドプローブは、制限酵素処理等によって取得される二本鎖DNA断片として作製することもできる。また、本発明のオリゴヌクレオチドは、天然のヌクレオチドデオキシリボヌクレオチドDNAやリボヌクレオチドRNAのみから構成されていなくともよく、非天然型のヌクレオチドにてその一部又は全部が構成されていてもよい。本発明に用いられる非天然型のヌクレオチドとしては、天然のヌクレオチドと同様の機能を有するものであれば特に制限されないが、本発明にかかる多型を含む塩基配列等に対するハイブリダイゼーションの効率を上昇させ、オリゴヌクレオチドプライマー及びオリゴヌクレオチドプローブの鎖長を短くすることができるという観点から、PNApolyamidenucleicacid、LNA登録商標、lockednucleicacid、ENA登録商標、2’-O,4’-C-Ethylene-bridgednucleicacids、及びこれらの複合体が好ましい。なお、PNAは、DNAやRNAのリン酸と5炭糖からなる主鎖をポリアミド鎖に置換したものである。LNAとはBNABridgedNucleicAcid、架橋化核酸とも称され、ヌクレオチドの2’の酸素と4’の炭素を架橋したRNAである。上記の試薬においては、有効成分であるオリゴヌクレオチド以外に、例えば、滅菌水、生理食塩水、植物油、界面活性剤、脂質、溶解補助剤、緩衝剤、保存剤等が必要に応じて混合されていてもよい。以下、実施例に基づいて本発明をより具体的に説明するが、本発明は以下の実施例に限定されるものではない。実施例1先ず、Modan由来イネ縞葉枯病抵抗性中間母本St.No.1と、感受性品種日本晴との塩基配列の比較を行い、Stvb-i遺伝子領域約44kb長にPCR用プライマーを数kb毎に設計した。設計したプライマーの配列等は表1に示す。また、プライマーが増幅する領域のゲノム上の位置関係については、図2及び3に示す。そして、これらプライマーを用いてPCRを行い、抵抗性と感受性との品種間での多型の有無を調べた。また、PCRに供する鋳型DNAの調製は、玄米を各品種系統3粒ずつ薬包紙に包んでペンチで粉砕し、市販のDNA簡易抽出溶液DNAすいすい株式会社リーゾ製を用いて行った。また、PCR反応液組成は、鋳型DNA10ng、プライマー各100μM、dNTP各120μM、Taqポリメラーゼ株式会社バイオメディカルサイエンス製0.1ユニット、塩化マグネシウム1.5mMとし,反応液量は10μlとした。そして、PCR反応は、94°C30秒、55°C30秒、72°C30秒にて35サイクルを基本プログラムとして行い、次いで、得られたPCR反応産物は、3.0アガロースゲルで電気泳動した後にエチジウムブロマイド染色し、電気泳動像を検出した。その結果、Stvb-i遺伝子領域内に設定した6種のプライマーセットST48、ST64、ST71、ST72、ST82及びST89は、Modanに由来する抵抗性イネと感受性イネとの間で多型を示すことが明らかになった表1Modan-タイプ及び感受性タイプ日本晴の項目参照。また、これら6種は塩基の挿入/欠失を利用したSSLPマーカーで、全て共優性であり、Modanに由来する抵抗性ホモ個体及びヘテロ個体の判別が可能であることが明らかになった。実施例2次に、これまでに報告のあるModan以外の縞葉枯病抵抗性品種インド型イネ及び日本陸稲:Mudgo、IR8、IR24、Kasalath、Surjumkhi、Karalath、Saturn、Nato、Calorina、白米粉、中母農2号、Zenith、戦捷、黒禾、陸稲農林11号、陸稲農林22号、陸稲農林24号、赤ヤカン、白鬚及び感受性品種Katakutara,あきたこまち,コシヒカリ,黄金晴,坊主糯,北海赤毛計25品種に対する、これら6種のマーカーのPCR増幅パターンを、前記方法と同様の方法にて調べた。その結果、図表には示さないが、ST48、ST64、ST72、ST82及びST89は、Modanのみ、又はModanを含む抵抗性品種の数種において、Modanと同じ増幅パターンを示した。また、感受性品種においてModanと同じ増幅パターンを示すものはなかった。これに対して、ST71は、Modanのみならず全供試抵抗性品種と感受性品種との間にて多型を示すことが明らかになった。実施例3そこで、ST71に着目し、IR24インド型イネ、抵抗性、日本陸稲の抵抗性遺伝子StvbStvb-iの対立遺伝子を保有する中国IL1号、及びその姉妹系統でStvbを保有しない中系IL6号等の各々のST71増幅断片の塩基配列を調べ、日本晴、コシヒカリ、St.No.1等の配列とともにDNAシーケンスアセンブルソフトウェアSequencherGeneCodes社製を用いて、比較した。得られた結果を図7~14に示す。図7~14に示す通り、抵抗性品種においては配列番号:13に記載の61塩基からなるリピート61bpリピートが1つ、感受性品種においては2つ存在することが明らかになった図10及び11のRepeat1及びRepeat2参照。また、感受性品種においては、日本晴のST71増幅断片を含む領域の塩基配列配列番号:5に記載の塩基配列の401位、又は該部位に対応する部位がアデニンAであるのに対し、抵抗性品種においては、当該部位に対応する部位がグアニンGであった図10参照。さらに、感受性品種においては、配列番号:5に記載の塩基配列の753位、又は該部位に対応する部位がチミンTであるのに対し、抵抗性品種においては、当該部位に対応する部位がシトシンCであることも明らかになった図13参照。従って、この61bpリピートをターゲットにしたマーカーST71を用いることによって、インド型イネのStvb-iを有する抵抗性品種のみならず、日本陸稲のStvbを有する抵抗性品種をも、感受性品種と判別できることが示唆された。実施例4次に、現在栽培されている代表的な飼料イネ及び新規需要米品種の中から縞葉枯病抵抗性10品種夢あおば、ホシアオバ、たちすがた、タカナリ、北陸193号、もちだわら、クサホナミ、クサノホシ、タチアオバ及びミナミユタカ、感受性の4品種クサユタカ、ミズホチカラ、モミロマン及びリーフスターについて、Stvb遺伝子座乗領域に設計した6種のマーカーST48、ST64、ST71、ST72、ST82、ST89及びST10を用いてPCR分析を試みた。また、Modanに由来する日本水稲の抵抗性比較品種として朝の光、日本水稲の感受性比較品種として日本晴及びコシヒカリについても当該PCR分析を試みた。なお、これら品種の縞葉枯病抵抗性又は感受性については、イネ縞葉枯病幼苗検定により確認されている表2参照。ST64、ST71及びST10を用いて得られた結果を図15及び表3に示す。さらに、Modan由来の抵抗性遺伝子Stvb-iを導入したSt.No.1のST64増幅断片の塩基配列を調べ、日本晴のST64増幅断片の塩基配列と比較した。得られた結果を図16及び17に示す。図15及び表3に示した結果から明らかなように、Stvb遺伝子座の縞葉枯病抵抗性マーカー選抜に有効と思われる2種のマーカーST71及びST64が得られた。すなわち、ST71のPCR増幅産物長は、感受性品種が388bpであるのに対して、抵抗性品種が327bpとなり、抵抗性遺伝子の由来に関わらず、イネ縞葉枯病幼苗検定の結果と一致する結果となった。また、図16及び17においても示されている通り、ST64のPCR増幅産物長は、感受性品種が208bpであるのに対して、Modanに由来するStvb-iを持つ抵抗性品種朝の光の増幅産物は362bpとなり、また、タチアオバにおいても同じ断片長の増幅産物が得られた。さらに、他の抵抗性品種8品種夢あおば、ホシアオバ、たちすがた、タカナリ、北陸193号、もちだわら、クサホナミ、クサノホシにおいては、感受性品種と同じ断片長付近に3本の増幅産物が確認された。また、抵抗性品種であるミナミユタカにおいては、感受性品種と同じ断片長のバンドが確認された。従って、ST64を用いたPCR分析によって、抵抗性品種と感受性品種とは完全に判別することはできないものの、Modanに由来するStvb-iを持つ抵抗性品種朝の光及びタチアオバとそれ以外の抵抗性品種とはST64を利用することによって判別できることが明らかになった。一方、ST10を用いたPCR分析において、縞葉枯病抵抗性9品種夢あおば、ホシアオバ、たちすがた、タカナリ、北陸193号、もちだわら、クサホナミ,クサノホシ、タチアオバは、Modanに由来するStvb-iを持つ抵抗性品種朝の光と同じ断片長727bpにバンドを示したが、抵抗性品種であるミナミユタカにおいては、感受性品種と同様に増幅産物が確認されなかった。このように、ST10を用いたPCR分析によって、抵抗性品種と感受性品種とは完全に判別することはできず、さらに抵抗性品種において、Modanに由来するStvb-iを持つ抵抗性品種朝の光及びタチアオバとそれ以外の抵抗性品種とを判別することもできないことが明らかになった。実施例5次に、日本陸稲に由来する抵抗性遺伝子を導入したコシヒカリ準同質遺伝子系統として中国IL1号及び中国IL3号、並びにCゲノム野生種であるO.officinalisが持つ抵抗性遺伝子をコシヒカリに導入した準同質遺伝子系統として和2128について、ST48、ST64、ST71、ST72、ST82、ST89及びST10を用いてPCR分析を試みた。なお、これら品種の縞葉枯病抵抗性又は感受性については、イネ縞葉枯病幼苗検定により確認されている表2参照。また、ST64、ST71及びST10を用いて得られた結果を図15及び表3に示す。図15及び表3に示した結果から明らかなように、日本陸稲由来の抵抗性を持つ中国IL1号及び中国IL3号、並びにCゲノム野生種由来の抵抗性を持つ和2128において、ST71のPCR増幅産物は327bpとなり、これらの系統においてもイネ縞葉枯病幼苗検定結果と一致する結果となった。一方、ST10を用いたPCR分析においては、中国IL1号、中国IL3号及び和2128の増幅産物は、感受性品種と同様に確認されなかった。以上の結果から、Stvb遺伝子座乗領域に新たに設計したマーカーのうち、ST71は供試した代表的な飼料イネ及び新規需要米品種の14品種を抵抗性と感受性とを明確に区別することができた。さらに、ST71ではStvbを有する系統及びCゲノム野生種O.officinalis由来の抵抗性を持つ和2128についても抵抗性の判別結果が得られた。従って、ST71は供試した24系統の全てにおいてPCR分析結果と縞葉枯病幼苗検定の結果とが一致し、インド型品種由来のStvb-i、日本陸稲由来のStvb及びCゲノム野生種由来の抵抗性等、縞葉枯病抵抗性の由来に関係なく選抜が可能となるマーカーとして利用できることが明らかになった。また、ST71は共優性マーカーであり、抵抗性の固定と分離とを識別することが可能である。さらに、PCRによる断片の増幅は安定しており、感受性断片と抵抗性断片との差が明確であるため図15参照、1.5程度のアガロースゲルにおいても容易に感受性断片と抵抗性断片とを識別することができる。従って、主食用飼料用を問わず水稲の育成系統は、ST71を用いることにより、縞葉枯病抵抗性系統を選抜することが可能となった。さらに、1960年代に主食用品種に導入された縞葉枯病抵抗性は、前述の通り、パキスタン原産のインド型品種Modanに由来するStvb-i遺伝子によるが、この遺伝子近傍には穂いもち抵抗性遺伝子Pb1が連鎖していることが知られている。そのため、縞葉枯病抵抗性と穂いもち抵抗性とが同時に導入できるため、Pb1についてもDNAマーカーによる選抜システムが構築され、耐病性を目的とした水稲育種には積極的に導入されてきた。しかし、Modan以外のインド型品種に由来するStvb-i遺伝子については、近傍領域に穂いもち抵抗性遺伝子が連鎖しているかどうかは不明であり、Modan以外のインド型品種由来抵抗性を持つ飼料イネ及び新規需要米品種の育成にはPb1選抜マーカーは用いる事ができなかった。また、2006年に育成されたタチアオバは、アメリカ品種Lemontから転び型倒伏抵抗性を導入したホールクロップサイレージ用品種であるが、育成系譜上にModan由来縞葉枯病抵抗性品種祭り晴が入っているため、縞葉枯病抵抗性の由来は不明であった。しかしながら、前述の通り、縞葉枯病抵抗性のマーカー選抜においては、ST71を用いる事で縞葉枯病抵抗性遺伝子の由来に関係なく、抵抗性と感受性とを識別することが可能となった。さらに、ST64を利用することにより、Modanに由来するStvb-iを持つ抵抗性品種朝の光及びタチアオバとそれ以外の抵抗性品種とは判別することができ表3参照、ひいては、Modanに由来するStvb-i遺伝子と連鎖することが知られている穂いもち抵抗性遺伝子Pb1の選抜効率の向上に寄与できることが示唆された。従って、これら2つのマーカーを組み合わせて用いることにより、図18に示すようなイネ縞葉枯病抵抗性、Modan由来の抵抗性、及び穂いもち抵抗性の識別システムを本発明は提供することができる。"