グリセリン酸又はその塩を有効成分とする、胃腸粘膜損傷細胞の賦活化剤。前記胃腸粘膜損傷が、アルコール誘導性の損傷である請求項1に記載の賦活化剤。グリセリン酸又はその塩を有効成分とし、医薬的に許容可能な担体を含むことを特徴とする、アルコール誘導性の胃腸粘膜損傷に基づく胃腸管損傷性疾患の予防又は治療用組成物。本発明は、アルコールを吸収する消化器官である胃や腸の粘膜細胞において、アルコール存在下における細胞の損傷に対して、細胞を賦活化させる作用又は細胞の賦活性の回復を促進する作用のある物質であって、かつ安全性の高い物質を提供しようというものである。本発明者らは、グリセリン酸又はその塩を用いてアルコールエタノール存在下での胃や腸の粘膜細胞に対する作用を研究する中で、アルコール存在下の胃腸粘膜細胞に対して賦活活性作用を及ぼすことを見出した。具体的には、DおよびLグリセリン酸塩、またその混合物を用いることで、アルコールにより損傷を受けたマウス及びヒトの胃由来の上皮細胞株の賦活活性が、グリセリン酸塩を投与しない場合と比較して有意に上昇させることができることを見出した。このことは、グリセリン酸又はその塩には、体内に吸収されたアルコールの代謝を促進するだけでなく、アルコールによって損傷を受けた胃腸の粘膜細胞に対して直接的に働きかけ、その賦活化能を促進する作用を同時に有することを示すものである。上記知見を得たことで、本発明者らは以下の本発明を完成させた。即ち、本発明は以下の通りのものである。1グリセリン酸又はその塩を有効成分とする、胃腸粘膜損傷細胞の賦活化剤。2前記胃腸粘膜損傷が、アルコール誘導性の損傷である前記1に記載の賦活化剤。3グリセリン酸又はその塩を有効成分とし、医薬的に許容可能な担体を含むことを特徴とする、アルコール誘導性の胃腸粘膜損傷に基づく胃腸管損傷性疾患の予防又は治療用組成物。本発明に係るグリセリン酸又はその塩は、アルコール損傷を受けた胃腸粘膜細胞に対して優れた賦活作用を有する。したがって、アルコール消費時の弊害であるアルコール誘導性の胃腸粘膜の損傷を回復させる効果、及び、アルコール誘導性の胃腸粘膜の損傷に基づく胃潰瘍、十二指腸潰瘍などの重篤なる胃腸管損傷性疾患に対して予防または治療効果を発揮する。本発明におけるグリセリン酸としては、D体、L体もしくはそれらの混合物であるが、その混合物としては、D体及びL体を任意の比率で配合した場合と共に、単離前のラセミ混合物も包含する。またグリセリン酸塩としては、薬理学的に許容される一価又は二価の塩であれば何でもいいが、水溶性であることが望ましい。典型的にはカルシウム塩、マグネシウム塩、ナトリウム塩またはカリウム塩である。グリセリン酸は粘調性があり扱いにくい点、及びグリセリン酸塩のうち、グリセリン酸カルシウムがD-体及びL-体のそれぞれの精製品が市販されていることから、本実施例では、当該精製D-、L-グリセリン酸カルシウムSigma社製を用いることとした。また、胃腸粘膜を形成する培養上皮細胞が、エタノール存在下で培養することで、エタノールの細胞毒性作用で受ける細胞の損傷を、どの程度回復させることができるかを検証するために、ラットの胃粘膜上皮細胞由来の公知培養細胞株RGM1細胞株:理研セルバンクと共に、ヒトの胃粘膜上皮細胞に由来する公知の培養細胞株KatoIII細胞株:理研セルバンクを用い、細胞毒性を及ぼすエタノール濃度3又は2に設定した培地中で24時間~72時間培養し、有意差をもって死滅する細胞数が減少することを観察した。本発明は、グリセリン酸又はその塩についての胃腸粘膜損傷細胞の賦活化剤、特にアルコール誘導性の胃腸粘膜損傷細胞に対する賦活化剤としての用途発明である。ここで、アルコール誘導性とは、飲酒などのエタノール摂取に起因することを意味し、アルコール誘導性の胃腸粘膜損傷に基づく胃腸管損傷性疾患とは、大量のエタノール摂取を原因とする胃炎、胃潰瘍、又は十二指腸潰瘍などの胃腸管粘膜細胞損傷性の各種疾患を意味する。以下、実施例を挙げて本発明を説明するが、本発明はこれらに限られるものではない。実施例1ラット胃粘膜上皮細胞株RGM1に対するエタノール毒性試験グリセリン酸による胃腸粘膜細胞に対する賦活活性を確認するため、ラット胃粘膜上皮細胞株であるRGM1細胞株理研セルバンクを用意した。RGM1細胞株は、20FetalBovineSerum含有DMEMHam’sF12培地ナカライテスク、CatNo1413395を使用して、CO2インキュベーター5CO2、37°C内で、週2回の培地交換で培養した。細胞を5×104個mlに調整し、100μlを96wellcultureplateCorningCatNo3276に分注し培養後、1日経過後、各濃度のエタノール0-10、ナカライテスクを添加した培地100μlに交換して24時間および72時間培養した。培養終了時に培地を取り除き、生細胞数測定試薬SFナカライテスク、catNo0755344を10の濃度で添加した培地100μlを加えて、37°C、5CO2で3時間までインキュベートし、その間、1時間おきにマイクロプレートリーダーPrecisionmicroplatereaderMolecularDeviceでサンプルの吸光度を測定した測定波長:450nm対象波長:595nm。細胞の増殖性を、1時間後の吸光度-30分後の吸光度の変化率として算出し、細胞賦活活性は、エタノールを添加していない条件コントロールの増殖性を100として示した。上記の試験結果を図1に示す。エタノール5添加では、24時間後の細胞生存率はコントロールと比べて23低下し、72時間ではエタノール2添加で50まで細胞生存率が低下した。これらの結果から、RGM細胞を用いた賦活化試験では、細胞賦活効果が観察しやすいエタノール濃度として3の濃度に設定して培養を行った。その際、グリセリン酸の立体異性体又はその混合比により効果が異なる可能性が考えられたため、D体及びL体精製品を用い、その配合比を変えて賦活効果を観察することとした。各実施例では、グリセリン酸またはその塩として、D体及びL体それぞれの精製品が市販されているD-及びL-グリセリン酸カルシウムを用いてエタノール存在下の細胞賦活効果を調べた。実施例2RGM1細胞株に対するD-グリセリン酸カルシウム塩の細胞賦活作用D-グリセリン酸カルシウム塩Sigma社製は、約20mgを秤量して、20mgmlになるように製氷水で溶解した。この溶液を0.2μmフィルターMinisart02μm、SartoriusCodeno16534でろ過滅菌し、20mgmlのストック溶液とした。細胞を5×104個mlに調整し、100μlを96wellcultureplateCorningCatNo3276に分注し培養後、1日経過後、各濃度のD-グリセリン酸カルシウム000220μgmlおよびエタノール3を添加した培地100μlに交換して24時間および72時間培養した。培養終了時に培地を取り除き、生細胞数測定試薬SFナカライテスク、catNo0755344を10の濃度で添加した培地100μlを加えて、37°C、5CO2で3時間までインキュベートし、その間、1時間おきにマイクロプレートリーダーPrecisionmicroplatereaderMolecularDeviceでサンプルの吸光度を測定した測定波長:450nm対象波長:595nm。細胞の増殖性は、1時間後の吸光度-30分後の吸光度の変化率として算出し、細胞賦活活性は、D-グリセリン酸カルシウム塩を添加していない条件の変化率を100として示した。上記の試験結果を図2に示す。エタノール存在下、24時間後ではサンプル濃度依存的にRGM1細胞の細胞賦活性は低下した。72時間後では影響を与えなかった。実施例3RGM1細胞株に対するL-グリセリン酸カルシウム塩の細胞賦活作用L-グリセリン酸カルシウム塩Sigma社製は、実施例2のD-グリセリン酸カルシウム塩と同様に、約20mgを秤量して、20mgmlになるように製氷水で溶解した。この溶液を0.2μmフィルターMinisart02μm、SartoriusCodeno16534でろ過滅菌し、20mgmlのストック溶液とした。細胞賦活性試験は、実施例2と同様に行い、D-グリセリン酸カルシウム塩の代わりにL-グリセリン酸カルシウム塩を用いて行った。上記の試験結果を図3に示す。エタノール存在下、24時間後ではサンプル濃度依存的にRGM1細胞の細胞賦活性が上昇した。一方で、72時間後では影響を与えなかった。実施例4RGM1細胞株に対するD/L-グリセリン酸カルシウム塩混合基質の細胞賦活作用グリセリン酸の立体異性体細胞賦活作用に及ぼす立体異性体の最適な配合比率を検討するために、DおよびL-グリセリン酸カルシウム塩は、実施例2および3で調整した20mgmlのストック溶液を用い、D体/L体の混合比が75/25、50/50、25/75の3種類を調整した。細胞賦活性試験は、実施例2と同様に行い、基質としてD-グリセリン酸カルシウム塩の代わりにD/L-グリセリン酸カルシウム塩混合基質を用いた。D/L=75/25の場合、時間に関わらずその作用は見られなかった図4。D/L=50/50の場合では、24時間および72時間後において、基質濃度依存的に細胞賦活作用が見られ、特に、濃度20μgmlの時に、24時間後および72時間後では細胞賦活作用が22および28上昇した図5。また、D/L=25/75の場合では、時間に関わらず細胞賦活作用に対する影響は見られなかった図6。これらの結果から、同じ濃度において、ラセミ混合物であるD/L=50/50のグリセリン酸カルシウム塩による細胞賦活作用が最大となることが明らかとなった。実施例5ヒト胃上皮由来細胞株KatoIIIに対するエタノール毒性試験グリセリン酸によるヒト胃腸粘膜細胞に対する賦活活性を確認するため、ヒト胃上皮由来細胞株であるKatoIII細胞理研セルバンクを用意した。KatoIII細胞株を、10FetalBovineSerum含有PRMI1640培地ナカライテスク、CatNo3026485を使用して、CO2インキュベーター5CO2、37°C内で、週2回の培地交換で培養した。細胞を5×104個mlに調整し、100μlを96wellcultureplateCorningCatNo3276に分注し培養後、1日経過後、各濃度のエタノール05、ナカライテスクを添加した培地100μlに交換して24時間および72時間培養した。培養終了時に培地を取り除き、生細胞数測定試薬SFナカライテスク、catNo0755344を10の濃度で添加した培地100μlを加えて、37°C、5CO2で3時間までインキュベートし、その間、1時間おきにマイクロプレートリーダーPrecisionmicroplatereaderMolecularDeviceでサンプルの吸光度を測定した測定波長:450nm対象波長:595nm。細胞の増殖性は、1時間後の吸光度-30分後の吸光度の変化率として算出し、細胞賦活活性は、エタノールを添加していない条件コントロールの増殖性を100として示した。上記の試験結果を図7に示す。24時間後の細胞生存率は、コントロールと比べて、エタノール5添加した場合にも有意な差は見られなかった。一方で、72時間ではエタノール2添加では、コントロールに対して45細胞生存率が低下した。これらの結果から、KatoIII細胞株を用いた賦活化試験では、細胞賦活効果が観察しやすいエタノール濃度として2の濃度に設定して培養を行い、添加するグリセリン酸カルシウム塩のD-体、L-体及びそれらの混合物それぞれの細胞賦活効果を調べた。実施例6KatoIII細胞株を用いたD-グリセリン酸カルシウム塩の細胞賦活作用D-グリセリン酸カルシウム塩は、実施例2で調整したものを用いた。細胞を5×104個mlに調整し、100μlを96wellcultureplateCorningCatNo3276に分注し培養後、1日経過後、各濃度のD-グリセリン酸カルシウム000220μgmlおよびエタノール3を添加した培地100μlに交換して24時間および72時間培養した。培養終了時に培地を取り除き、生細胞数測定試薬SFナカライテスク、catNo0755344を10の濃度で添加した培地100μlを加えて、37°C、5CO2で3時間までインキュベートし、その間、1時間おきにマイクロプレートリーダーPrecisionmicroplatereaderMolecularDeviceでサンプルの吸光度を測定した測定波長:450nm対象波長:595nm。細胞の増殖性は、1時間後の吸光度-30分後の吸光度の変化率として算出した。上記の試験結果を図8に示す。エタノール存在下、24時間後では明確な細胞賦活活性は見られなかったが、72時間後ではサンプル濃度依存的にKatoIII細胞の細胞賦活性が上昇し、D体20μgmlの場合でコントロールと比較して33上昇した。実施例7KatoIII細胞株を用いたL-グリセリン酸カルシウム塩の細胞賦活作用L-グリセリン酸カルシウム塩は、実施例3で調整したものを用いた。細胞賦活性試験は、実施例2と同様に行い、D-グリセリン酸カルシウム塩の代わりにL-グリセリン酸カルシウム塩を用いて行った。上記の試験結果を図9に示す。エタノール存在下、24時間後では細胞賦活作用は見られなかったが、72時間後では、サンプル濃度依存的にKatoIII細胞の細胞賦活性が上昇した。実施例8KatoIII細胞株を用いたDL-グリセリン酸カルシウム塩の細胞賦活作用DL-グリセリン酸カルシウム塩のストック溶液20mgmlは、実施例2のとおりD-グリセリン酸カルシウムの代わりにDL-グリセリン酸カルシウム塩を用いて調整した。細胞賦活性試験は、実施例2と同様に行い、基質としてD-グリセリン酸カルシウム塩の代わりにDL-グリセリン酸カルシウム塩を用いた。上記の結果を図10に示す。24時間後では、KatoIII細胞の賦活活性の上昇は見られなかったが、72時間後においては、基質濃度依存的に細胞賦活作用が見られ、特に、濃度20μgmlの時に、細胞賦活活性がコントロールの場合無添加と比較して98上昇した。これらの結果から、KatoIII細胞においても、ラセミ混合物であるDL-グリセリン酸カルシウム塩による細胞賦活作用が確認された。