遺伝的に改変された酵母菌株であって、aAIF1遺伝子の発現抑制;bYSP1遺伝子の発現抑制;cYCA1遺伝子の発現抑制;dDLD3遺伝子の発現抑制;ePDR5遺伝子の発現抑制;fDCG1遺伝子の発現増強;およびgLEU2遺伝子の発現増強からなる群から選択される少なくとも一つの遺伝的改変を有する、酵母菌株。前記a、b、c、dおよびeにおける遺伝子の発現抑制が、酵母菌株のゲノムにおける遺伝子の破壊によって行われる、請求項1に記載の酵母菌株。前記fおよびgにおける遺伝子の発現増強が、酵母菌株への遺伝子導入によって行われる、請求項1または2に記載の酵母菌株。アルコールを合成するための遺伝子により形質転換されているものである、請求項1~3のいずれか一項に記載の酵母菌株。前記アルコールが、イソプロパノール、イソブタノールまたはエタノールである、請求項4に記載の酵母菌株。前記アルコールがイソプロパノールである、請求項4に記載の酵母菌株。キャンディダ属に属するものである、請求項1~6のいずれか一項に記載の酵母菌株。キャンディダユティリスである、請求項1~7のいずれか一項に記載の酵母菌株。請求項1~8のいずれか一項に記載の酵母菌株を培養することを含んでなる、アルコールを製造する方法。前記アルコールが、イソプロパノール、イソブタノールまたはエタノールである、請求項9に記載の方法。前記アルコールがイソプロパノールである、請求項9に記載の方法。前記酵母菌株が、サッカロミセス属またはキャンディダ属に属するものである、請求項9~11のいずれか一項に記載の方法。前記酵母菌株が、サッカロミセスセレビシエまたはキャンディダユティリスである、請求項9~12のいずれか一項に記載の方法。以下、実施例を挙げて本発明をより具体例に説明するが、これら実施例は本発明の技術的範囲を制限するものではない。実施例1:サッカロミセスセレビシエにおける遺伝子破壊とアルコール耐性との関連実施例1-1:遺伝子破壊とIPA耐性との関連OpenBiosystems社より提供される非必須遺伝子破壊株コレクション2倍体シリーズYeastHomozygousDiploidCollectionを用いて、IPA耐性に関わる遺伝子のスクリーニングを行った。このコレクションは、サッカロミセスセレビシエ2倍体であるBY4743株の遺伝子型において、非必須遺伝子を1遺伝子ずつホモで破壊された遺伝子型を有する株から構成される。また、親株であるBY4743株とは異なり、それらの破壊株はジェネティシンG418に対する耐性能を付与する発現カセットを有している。酵母BY4743株はYPD液体培地にて、破壊株は、G418を添加したYPD液体培地にて、2日間、30°Cで振とう培養した。それぞれの菌体を、IPAが0、50、55、60、65、70、75、80、85、90、95、100、105、110、115、120、125、130の濃度で含まれるYPD寒天培地に塗布した。30°Cで4日間培養した後、遺伝子破壊の元株であるBY4743株に比較して、高い濃度で旺盛に生育できる株を選抜した。BY4743株の最大生育濃度よりも05以上高い濃度で生育した株として、あるいは、BY4743株の最大生育濃度においてBY4743株よりも旺盛に生育する株として、YHR155W、YGL237C、YKL146W、YPL119C、YIL054W、YGR063C、およびYGL181Wを得た図1。また、YNR074C、YOR153W、およびYEL071Wも野生株よりも旺盛に増殖することを見出した。実施例1-2:IPA含有培地での培養における野生株とysp1破壊株の比較BY4743株およびysp1破壊株を、3mlのYPD培地で1晩、30°Cで好気的に振とう培養した。それぞれの細胞を、OD600値が02になるように、14ml容ラウンドチューブ中の3mlのYPD培地、ならびに15、30、45、および60の濃度でIPAを含むYPD培地に接種し、30°Cで24時間、好気的に振とう培養を行った。その結果、IPAを含まないYPD培地では菌体濃度に有意な差が見られなかったが、IPAを含む培地では、ysp1破壊株はBY4743株に比べて有意に菌体濃度が高かった図2。このことはysp1破壊株が野生株よりもIPAを含む培地で速く増殖できることを示している。実施例1-3:各種アルコールを含有する培地での培養における野生株とysp1破壊株の比較BY4743株およびysp1破壊株を、3mlのYPD培地で1晩、30°Cで好気的に振とう培養した。それぞれの細胞を、OD600値が02になるように、14ml容ラウンドチューブ中の3mlのYPD培地、ならびに3イソプロパノール、5メタノール、6エタノール、11プロパノール、051ブタノール、12ブタノール、05イソブタノール、05イソアミルアルコールをそれぞれ含むYPD培地に接種し、30°Cで24時間、好気的に振とう培養を行った。その結果、イソプロパノール、メタノール、1-ブタノール、2-ブタノール、およびイソブタノールをそれぞれ含む培地では、BY4743株に比べて、ysp1破壊株は有意に菌体濃度が高かった図3。また、3IPAを含む培地での24時間後の培養サンプルに関し、その培養上清のIPA濃度を調べた。その結果、BY4743株は279±003であり、ysp1破壊株は270±027であった。つまり、培養時の培地からのIPAの損失に違いは認められなかった。実施例1-4:イソプロパノールまたはエタノールを含有する培地での培養における、野生株とアポトーシス関連遺伝子および偽菌糸形成関連遺伝子を破壊した株との比較YSP1遺伝子はアポトーシスに関連する遺伝子であることが報告されている25769。そこで、アポトーシスに関連することが知られているその他の遺伝子あるいはアルコールによって誘導される偽菌糸形成関連遺伝子なども含めて解析を行った。具体的には、BY4743株、ならびにYHR155W、YAL039C、YJL112W、YLL001W、YIL065C、YJL208C、YEL071W、YOL151W、YOR153W、YOR197W、およびYNR074Cの各遺伝子を破壊した株を、3mlのYPD培地で1晩、30°Cで好気的に振とう培養した。それぞれの細胞を、OD600値が02になるように、14ml容ラウンドチューブ中の3mlの30IPAを含むYPD培地および60エタノールを含むYPD培地に接種し、30°Cで24時間、好気的に振とう培養を行った。その結果、ysp1、aif1、dld3、pdr5遺伝子破壊株では、IPAを含む培地において、BY4743株に比べて有意に菌体濃度が高かった図4。また、これら遺伝子破壊株のうち、dld3、pdr5遺伝子破壊株についてはエタノールに対しても有意に増殖能が高かった図5。実施例1-5:イソブタノールを含有する培地での培養における野生株と各種遺伝子破壊株との比較BY4743株、ならびにysp1、fis1、dld3、pdr5、yca1、およびaif1の各遺伝子を破壊した株を、3mlのYPD培地で1晩、30°Cで好気的に振とう培養した。それぞれの細胞を、OD600値が02になるように、14ml容ラウンドチューブ中の3mlの15イソブタノールを含むYPD培地に接種し、30°Cで24時間、好気的に振とう培養を行った。その結果、ysp1、dld3、pdr5、yca1、aif1遺伝子破壊株では、BY4743株に比べて有意に菌体濃度が高かった図6。実施例1-6:高濃度イソプロパノールエタノールに対する耐性能評価BY4743株、ならびにysp1、fis1、dld3、pdr5、yca1、aif1、nuc1、dnm1、およびmdv1の各遺伝子を破壊した株を、3mlのYPD培地で1晩、30°Cで好気的に振とう培養した。得られた各菌体を、水、、16エタノール、および12IPAのそれぞれに25°Cで3時間暴露しこの時のOD600値は約10、そのうちの5万分の1量の菌体をYPDプレートに塗布した後、3日後のコロニーの数を調べた。水に曝露したときのcfuを100とした場合の各アルコール曝露時のcfuを、生存率としてcfuで表した。その結果、aif1破壊株およびyca1破壊株は、高濃度のイソプロパノール曝露に関して、BY4743株に比べて有意に生存率が高かった図7。さらに、mdv1破壊株、nuc1破壊株、dld3破壊株、およびpfr5破壊株は、高濃度のエタノール曝露に関して、BY4743株に比べて有意に生存率が高かった図8。実施例1-7:高濃度イソプロパノールエタノールイソブタノールに対する耐性能評価破壊株コレクションからの選抜株のうち、YHR155W、YGL237C、YKL146W、YPL119C、YIL054W、YGR063C、およびYGL181Wに関し、エタノール、IPA、およびイソブタノールに対する耐性能を評価した。比較対照は、野生株であるBY4743株とした。YPD液体培地において1晩30°Cで好気的に振とう培養して調製した菌体を、水、または高濃度のアルコール16エタノール、12イソプロパノール、または036イソブタノールに3時間暴露しこの時のOD600値は約10、そのうちの5万分の1量の菌体をYPDプレートに塗布した後、2日後のコロニーの数を調べた。その後、各種アルコールで処理した場合のコロニー数を、水で処理した場合のもので除した図9。図9より、spt4破壊株やgts1破壊株は、IPAだけでなく、エタノールやイソブタノールに対する耐性能が高いことがわかる。実施例2:サッカロミセスセレビシエにおける遺伝子過剰発現とアルコール耐性との関連実施例2-1:遺伝子過剰発現とIPA耐性との関連この実験は、OpenBiosystems社より提供されるScerevisiaeのORF過剰発現コレクション酵母版ORFCollectionYeastを用いて行った。これは、1倍体のサッカロミセスセレビシエ株ウラシル要求性に、任意のORFを持つ多コピー型のプラスミドが導入されたコレクションである。プラスミドを保持しているか否かはウラシル栄養性で確認した。また、各ORFはガラクトース誘導性のGAL1遺伝子プロモーターの下流に連結されている。なお、コントロール株には、ホスト株Y258に、同じくウラシル独立栄養性の表現型を付与する多コピー型ベクターGAL1プロモーターとその下流にORFがないものを構築した。菌株を、2ラフィノース、067Nitrogenbasewithoutaminoacid、05カザミノ酸、500μgmlトリプトファン、および200μgmlアデニンから構成される液体培地で、2日間培養した。さらに同培地で継代培養した後、菌体を、2ラフィノース、2ガラクトース、067Nitrogenbasewithoutaminoacid、05カザミノ酸、500μgmlトリプトファン、200μgmlアデニン、および2アガーから構成されるSRGa培地に塗布した。なお、この際も、前記組成に加え、IPAを全く含まない培地、さらには50、55、60、65、70、75、80、85、90、95、100、105、および110の各濃度でIPAを含む培地を用いた。培養は、30°Cで4~5日間行った。コントロール株と比較してIPA耐性能が高い株として、88株を選抜した。次に、これらの株が有するプラスミドをBY4743株に導入し、形質転換体の耐性能を評価した結果、12遺伝子が、酵母にイソプロパノール耐性能を付与する遺伝子として同定された。具体的には、YCL018W、YJL077C、YFR054C、YOL129W、YHR111W、YCL073C、YBL072C、Q0142、YPL081W、YIR030C、YPR103W、YDR208Wである図10。実施例2-2:イソプロパノールエタノールイソブタノールに対する耐性能評価過剰発現コレクションからの選抜株12株に関し、エタノール、IPA、およびイソブタノールに対する耐性能を評価した。YPD液体培地において、1晩、30°Cで好気的に振とう培養して調製した菌体を、水、または高濃度のアルコール16エタノール、12イソプロパノール、または036イソブタノールに3時間暴露しこの時のOD600値は約10、そのうちの5万分の1量の菌体をYPDプレートに塗布した後、2日後のコロニーの数を調べた。その後、各種アルコールで処理した場合のコロニー数を、水で処理した場合のもので除した図11。その結果、IPAだけでなく、エタノールやイソブタノールに対する耐性能も高い株が複数見出された。実施例2-3:キャンディダユティリスにおける耐性遺伝子の過剰発現サッカロミセスセレビシエのDCG1遺伝子について、キャンディダユティリスCandidautilisにおけるホモログ遺伝子を同定し、CuDCG1bと名づけたヌクレオチド配列:配列番号35;アミノ酸配列:配列番号36。キャンディダユティリスで発現させることが可能なpGAPURA14537を用いてCuDCG1b遺伝子をキャンディダユティリスATCC15239株で発現させたDCG1株。また、CuDCG1b遺伝子を含まないpGAPURA1Emptyvectorを導入したATCC15239株も用意した。これらの株について、3IPAを含むYPD培地での増殖試験を実施した結果、DCG1株は、Emptyvector株に比べて、その増殖能が優れていることが明らかになった図12。IPA耐性について、サッカロミセスセレビシエで特定された遺伝子は、キャンディダユティリスで相同性の高い遺伝子を用いても同様の効果が得られることが示された。