トウモロコシ胚芽タンパク質から降圧活性ペプチドを調製するための工業的な酵素による加水分解方法であって、1反応槽にトウモロコシ胚芽タンパク質粉末を加え、水とトウモロコシ胚芽タンパク質粉末を、水とトウモロコシ胚芽タンパク質粉末の比率100:6~12L:kgで混合し、pH9~11に調整し、50~80°Cまで加熱し、この温度で20~60分間撹拌して、アルカリ性供給液を得るステップと、2反応槽内のアルカリ性供給液をディスク型遠心分離機内にポンプで送り込んでアルカリ性供給液を透明な液体とスラグに分離し、スラグを回収後、スラグを水で希釈し、50~80°Cまで加熱し、撹拌し、分離する同じ加工処理を3回繰り返して精製スラグを得るステップと、3水-スラグの比率100:40~50で精製スラグを水と混合し、撹拌し、pH7~9に調整し、40~60°Cまで加熱し;タンパク質1グラム当たり2000~5000ユニットの酵素量で、アルカラーゼ2.4Lを加え、反応を3~5時間持続させ;次いで、タンパク質1グラム当たり1000~2000ユニットの酵素量で、パパインおよびディスパーゼII1:1を45~55°Cの温度で加え、酵素による加水分解を1~2時間持続させ;最後に、酵素による加水分解物を120°Cまで加熱し、酵素を10分間の失活に供するステップとを含むことを特徴とする方法。トウモロコシ降圧活性ペプチド粉末が、酵素加水分解供給液から、分離、濃縮、脱色および乾燥を経て調製され、具体的なステップが、1請求項1に記載のトウモロコシ胚芽タンパク質の酵素による加水分解物を、円筒型遠心分離機により、回転速度12000~16000r/分で遠心分離し;透明な遠心分離液を保持し、この液を圧力0.2~0.4MPaおよび温度30~80°Cの条件下で、孔径0.05~0.1μmの精密濾過および限外濾過装置を通して濾過して、トウモロコシ降圧活性ペプチドの透明な濾液を得るステップと、2濾液を、二重効用流下膜式蒸発器を用い、蒸気圧0.1±0.02MPa、および温度40~80°Cの条件下で濃縮溶液の固体含有量が20~50になるまで蒸発させ;脱色のために、濃縮溶液含有量の5の割合で活性炭素粉末を加え、濃縮溶液を80°Cまで加熱し、この温度で20~40分撹拌し、次いで、ロールナノ濾過膜を用いて濾過するステップと、3トウモロコシ降圧活性ペプチドの濃縮溶液を、遠心噴霧乾燥機により、入口温度160~180°Cおよび出口温度80~90°Cの条件下で乾燥させて、トウモロコシ降圧活性ペプチド粉末を得るステップとであることを特徴とする、請求項1に記載の工業的な酵素による加水分解方法。分子量が1000Da未満の構成成分が92超を占め、遊離アミノ酸の含有量が5未満であることを特徴とする、請求項1または2に従って調製されるトウモロコシ降圧活性ペプチド。少なくとも0.6のアラニン-チロシンAla-Tyr、AY配列のペプチド断片を含有することを特徴とする、請求項1または2に従って調製されるトウモロコシ降圧活性ペプチド。請求項1または2に従って調製されるトウモロコシ降圧活性ペプチドの、健康機能性食品または医薬品における製品または原材料としての使用。本発明の目的は、トウモロコシ胚芽タンパク質を加工処理し利用する方法を拡大すること、およびトウモロコシ胚芽タンパク質からトウモロコシ降圧活性ペプチドを得るための工業的方法を確立することである。上記の目的を実現するために、本発明では、アルカリ加熱処理と連続的な酵素による加水分解とを組み合わせる方法が使用され、その方法では、トウモロコシ胚芽タンパク質粉末と水を、水とトウモロコシ胚芽タンパク質粉末の比率100:6~12L:kgで混合し、pH9~11に調整し、50~80°Cまで加熱し、この温度で20~60分撹拌して、アルカリ性供給液を得る。次いで、反応槽内のアルカリ性供給液をディスク型遠心分離機内にポンプで送り込んで、アルカリ性供給液を透明な液体とスラグに分離する。スラグを回収した後、スラグを水で希釈し、50~80°Cまで加熱し、撹拌し、分離する。同じ加工処理を3回繰り返して精製スラグを得る。精製スラグを、水-スラグの比率100:40~50で水と混合し、撹拌し、pH7~9に調整し、40~60°Cまで加熱する。タンパク質1グラム当たり2000~5000ユニットの酵素量で、アルカラーゼ2.4Lを加え、反応を3~5時間持続させる。次いで、タンパク質1グラム当たり1000~2000ユニットの酵素量で、パパインおよびディスパーゼDispaseII1:1を45~55°Cの温度で加え、酵素による加水分解を1~2時間持続させる。最後に、酵素の溶液を120°Cまで加熱し、10分間の酵素失活処理を行う。トウモロコシ胚芽タンパク質の酵素による加水分解物を、円筒型遠心分離機により、回転速度12000~16000r/分で遠心分離する。透明な遠心分離液centrifugalliquidを保持し、圧力0.2~0.4MPa、および温度30~80°Cの条件下で、孔径0.05~0.1μmの精密濾過および限外濾過装置を通して濾過し、トウモロコシ降圧活性ペプチドの透明な濾液を得る。トウモロコシ降圧活性ペプチドの濾液を、二重効用流下膜式蒸発器double-effectfallingfilmevaporatorを用い、蒸気圧0.1±0.02MPa、および温度40~80°Cの条件で、濃縮溶液の固体含有量が20~50になるまで蒸発させる。脱色のために、濃縮溶液含有量の5の割合で活性炭素粉末を加え、濃縮溶液を80°Cまで加熱し、この温度で20~40分撹拌し、次いで、ロールナノ濾過膜rollnanofirtrationmembraneを用いて濾過する。トウモロコシ降圧活性ペプチドの濃縮溶液を、遠心噴霧乾燥機により、入口温度160~180°C、および出口温度80~90°Cの条件下で乾燥し、トウモロコシ降圧活性ペプチド粉末を調製する。化学成分分析を使用して、調製したトウモロコシ降圧活性ペプチドの基本的な物理的組成および化学的組成を決定し、トウモロコシ降圧活性ペプチドの成分の分子量分布を高速液体クロマトグラフィー分析によって測定する。分子量が1000Da未満の構成成分が全体で92超を占め、遊離アミノ酸の含有量は5未満であることが分かる。Invitroにおける安定性試験により、温度範囲30~100°C、pH変動範囲3~11、ならびに、ペプシン消化、トリプシン消化、およびペプシン消化に続くトリプシン消化に対して、トウモロコシ降圧活性ペプチドが良好な安定性を有することが示されている。Invitro試験により、トウモロコシ降圧活性ペプチドが、invitroで良好なACE阻害活性を有することが示されている。液体クロマトグラフィーによる分離および質量分析を用いて、トウモロコシ降圧活性ペプチドのペプチド断片の分離および構造的同定を行い、特徴的な降圧性ペプチド断片であるアラニン-チロシンAla-Tyr、AYが0.6超を占める、生理活性を有するペプチド断片7種が同定されている。トウモロコシ降圧活性ペプチドのinvivoにおける血圧低下作用を、自然発症高血圧ラットspontaneoushypertensiveratSHRをモデルとして用いて検証し、トウモロコシ降圧活性ペプチドがinvivoにおいて良好な降圧作用を有し、保健健康食品および医薬の分野に適用することができることが確認されている。以下は図面の簡単な説明である。本発明を、図および具体的な実施形態を参照してさらに説明するが、これらは本発明の範囲を限定するものではない。具体的なプロセス経路は、以下のステップからなる:1.トウモロコシ降圧活性ペプチドの調製トウモロコシ胚芽タンパク質粉末600kgを反応槽Iに加え、水と、水とトウモロコシ胚芽タンパク質粉末の比率100:9L:kgで混合し、pH9~11に調整し、65°Cまで加熱し、この温度で40分間撹拌する。反応槽内のアルカリ性供給液をディスク型遠心分離機内にポンプで送り込んで、透明な液体とスラグに分離する。回収したスラグを反応槽IIに加え、透明な液体を廃棄する。スラグを水で希釈し、65°Cまで加熱し、撹拌し、分離する。油、デンプン、繊維および他の非タンパク質物質を除去するために、同じ加工処理を3回繰り返す。精製スラグを、水と、水-スラグの比率100:45で混合し、撹拌する。トウモロコシ胚芽タンパク質溶液をpH8に調整し、50°Cまで加熱する。タンパク質1グラム当たり3500ユニットの酵素量で、アルカラーゼ2.4Lを加え、反応を4時間持続させる。次いで、タンパク質1グラム当たり1500ユニットの酵素量で、パパインおよびディスパーゼII1:1を50°Cの温度で加え、酵素による加水分解を1.5時間持続させる。次いで、酵素の溶液を120°Cまで加熱し、10分間の酵素失活処理を行う。加水分解溶液を、円筒型遠心分離機により、回転速度14000r/分で遠心分離する。透明な液体とスラグを分離する。透明な遠心分離液を保持し、圧力0.3MPa、および温度55°Cの条件下で孔径0.06μmの精密濾過および限外濾過装置を通して濾過して、トウモロコシ降圧活性ペプチドの透明な濾液を調製する。トウモロコシ降圧活性ペプチドの濾液を、二重効用流下膜式蒸発器を用い、蒸気圧0.1MPa、および温度60°Cの条件で、濃縮溶液の固体含有量が40になるまで蒸発させる。濃縮溶液含有量の5の割合で活性炭素粉末を濃縮溶液に加え、濃縮溶液を80°Cまで加熱し、この温度で30分間撹拌し、次いで、濾過する。トウモロコシ降圧活性ペプチドの濃縮溶液を、遠心噴霧乾燥機により、入口温度170°C、および出口温度85°Cの条件下で乾燥させて、トウモロコシ降圧活性ペプチド116.25kgを調製する。2.トウモロコシ降圧活性ペプチドの物理的および化学的組成の分析ならびに分子量分布MWDトウモロコシ降圧活性ペプチドの物理的および化学的組成の分析結果:総タンパク質の含有量は89.28であり、脂肪の含有量は0.05であり、灰分の含有量は5.06であり、水分の含有量は5.21である。以上から分かるように、本発明で調製されるトウモロコシ降圧活性ペプチドの総タンパク質含有量は85超であり、生成物の品質は高い。トウモロコシ降圧活性ペプチド試料をGEL-HPLCに注入した後、試料ペプチドの相対的な分子質量およびその分子量分布範囲を、液体クロマトグラフィーデータ処理ソフトウェアを用いてトウモロコシ降圧活性ペプチドのゲルクロマトグラフィーのデータを較正曲線方程式に代入することによって算出する。分子量が1000Da以下のジペプチドおよびトリペプチドはヒトの体内における吸収率および利用率が非常に高く、したがって、遊離アミノ酸よりも栄養価および生理機能が高い。本発明によると、最小のジペプチドGly-Glyの分子量132Daおよび最大のトリペプチドTrp-Trp-Trpの分子量576Daを分子量範囲の境界値として使用し、また、ピーク面積比較法peakareanormalizationmethodを採用して、表1に示されているようにトウモロコシ降圧活性ペプチドの相対的な分子量分布範囲を算出する。分子量分布の結果から、分子量が1000Da未満の構成成分が全体で93.05を占める。アミノ酸の平均分子量137Daに従って算出すると、分子量が1000Da以下の構成成分は、いくらかの遊離アミノ酸を含む、主に、オクタペプチドよりも低次のオリゴペプチドである。分子量が132Da~576Daの構成成分が78.17を占め、それが、分子量が1000Da未満である構成成分の大半を形成し、主にジペプチド、トリペプチドおよびテトラペプチドである。3.トウモロコシ降圧活性ペプチドのinvitroにおける安定性20°C、40°C、60°C、80°C、および100°Cのウォーターバスに2時間入れた後のトウモロコシ降圧活性ペプチド試料の分子量分布を表2に示す。異なる温度のウォーターバスに2時間入れた後、トウモロコシ降圧活性ペプチドにおける分子量が1000Da未満の構成成分の総含有量には実質的な変化はなく、約93を占めている。各分子量範囲の比率の変化は2以下である。異なる温度におけるトウモロコシ降圧活性ペプチドの逆相クロマトグラフィーを図1Aに示す。異なる温度でウォーターバスに2時間入れた後に、トウモロコシ降圧活性ペプチドの逆相クロマトグラフィーはほとんど変化せず、ピークの数とピーク時間はよく一致していることがわかる。同時に、類似性算出ソフトウェアにより算出された類似性は約0.99である。37°Cで、それぞれpH3、5、7、9、および11のウォーターバスに2時間入れた後のトウモロコシ血圧降下活性ペプチド試料の分子量分布を表3に示す。異なるpH条件下で、37°Cのウォーターバスに2時間入れた後、トウモロコシ降圧活性ペプチドにおける分子量が1000Da未満の構成成分の総含有量には実質的な変化はなく、約93を占めている。各分子量範囲の比率の変化は、1以下である。異なるpHの下でのトウモロコシ降圧活性ペプチドの逆相クロマトグラフィーを図1Bに示す。異なるpH条件下で37°Cのウォーターバスに2時間入れた後に、トウモロコシ降圧活性ペプチドの逆相クロマトグラフィーはほとんど変化せず、ピークの数とピーク時間はよく一致していることがわかる。同時に、類似性算出ソフトウェアにより算出された類似性は0.99超であった。すなわち、分子極性の観点からすると、トウモロコシ血圧降下活性ペプチドの組成にはほとんど変化がない。ペプシン消化、トリプシン消化、および、ペプシン消化に続くトリプシン消化をそれぞれ行った後のトウモロコシ降圧活性ペプチドの分子量分布を表4に示すC:ブランク対照;P:ペプシン消化;T:トリプシン消化;PT:ペプシン消化に続くトリプシン消化。異なる消化様式では、トウモロコシ降圧活性ペプチドにおける分子量が1000Da未満の構成成分の総含有量はわずかに増加するが、2未満の増加である。分子量範囲が1000~576Daである構成成分の割合はわずかに低下するが、1未満の低下であり、これにより、酵素分解により消化されるペプチド断片は非常に少量であることが示されている。これに対応して、より分子量の小さい構成成分がわずかに増加し、この増加は主に132Da未満の範囲に集中しており、消化されたごく一部の構成成分は、主に低分子アミノ酸に分解されたことが示されている。ペプシン消化、トリプシン消化、およびペプシン消化に続くトリプシン消化によってそれぞれ消化された組成物の逆相クロマトグラフィーを図1Cに示す;異なる消化様式の後、トウモロコシ降圧活性ペプチドの逆相クロマトグラフィーではわずかな変化があるが、主要なピークの数とピーク時間はよく一致していることがわかる。対照群と比較して、類似性算出ソフトウェアにより算出された各クロマトグラフィーの類似性は0.93超である。すなわち、分子極性の観点からすると、トウモロコシ降圧活性ペプチドの組成はわずかに変化する、すなわち、変化は小さい。4.トウモロコシ降圧活性ペプチドのinvitroにおけるACE阻害活性および象徴的なペプチド断片の分析N-Hippuryl-His-LeuHHL法を用いて、invitroにおけるACE阻害活性をHPLCにより検出する。降圧活性ペプチドを加える前と加えた後の馬尿酸生成物のクロマトグラフィーのピーク面積の差を測定する。この差は、降圧活性ペプチドの降圧活性の変化を反映する。ACE阻害率を以下の通り算出する:ACE阻害率=M-N100/N、Mはブランク対照群における馬尿酸のピーク面積mAUsであり、Nは阻害剤を加えた群における馬尿酸のピーク面積であるmAUs。異なる濃度におけるトウモロコシ降圧活性ペプチド溶液のACE阻害率を表5に示す。測定、算出したトウモロコシ降圧活性ペプチドのIC50は1.02mg/mLであり、このトウモロコシ降圧活性ペプチドがinvitroにおける良好なACE阻害活性を有することが示されている。液体クロマトグラフィーによる分離および質量分析を用いることにより、トウモロコシ降圧活性ペプチドのペプチド断片の単離および構造同定を行う。現在のところ、53種のペプチド断片の構造が同定されている。トウモロコシプロテオミクスの配列データベースとの対照によると、32種のペプチド断片のアミノ酸配列が、トウモロコシプロテオミクスにおける既存の断片の配列と一致し、これにより、これらのペプチドが、トウモロコシタンパク質の加水分解によって生じることが示されている。生物活性ペプチドデータベースと比較することにより、降圧活性を有するアラニン-チロシンAla-Tyr、AYが含まれていることが分かる。YanjunYangらJ.Agric.FoodChem.、2007年、55巻19号により、AYが降圧性ペプチド断片であり、そのinvitroにおける降圧活性IC50が14.2μMであることが見いだされた。SHRに用量50mg/kgで経口挿管した2時間後の血圧の降下は9.5mmHgである。本発明者らは、AYの高速液体クロマトグラフィー分析による定量法を考案した。前処理した後、トウモロコシ降圧活性ペプチド試料を、逆相C18充填剤を固定相として使用して試料構成成分の分子極性の差異によって分離し、UV吸収波長220nmにおいて検出する。クロマトグラムおよびそのデータ図2を、外部標準法を用いて処理して数値化する。算出されたAY含有量は1.13である。トウモロコシ降圧活性ペプチド試料の異なるバッチが全て0.6超のAYを含有することを考慮して、AYをトウモロコシ降圧活性ペプチドの特徴的な構成成分として使用する。5.トウモロコシ降圧活性ペプチドの、自然発症高血圧症ラットに対する降圧効果自然発症高血圧症ラットをモデル動物として用いて、トウモロコシ降圧活性ペプチドを異なる用量体重1kg当たり0.45g、1.35g、および4.05gで胃管投与gavageする。ブランク対照群には、適切な用量の蒸留水を胃管投与する。陽性対照群には、体重1kg当たり10mgのカプトプリルを胃管投与する。8週間の連続的な胃管投与後、各群のラットの体重、心臓/体重比、心拍数に有意な変化はないP>0.05。試験の間、対照群のラットの血圧はおよそ200mmHgであり、胃管投与期間にわたってわずかに上昇したが、差は有意ではないP>0.05。低用量群のラットの血圧は胃管投与期間にわたって徐々に低下した。第6週における血圧はブランク対照群と比較して有意に異なりP<0.05、そのような有意差は第7週および第8週において維持されP<0.05、血圧は15.6低下した。中用量群のラットの血圧は胃管投与期間にわたって低下したが、わずかに緩やかであった;第8週まで、血圧はブランク対照群と比較して有意に異なりP<0.05、血圧は10.3低下した。高用量群のラットの血圧は8週間においてわずかに低下したが、ブランク対照群と比較して差は有意ではないP>0.05表6。高用量群およびカプトプリル群の血清アルドステロン濃度は、対照群よりも有意に低いP<0.01、図4。試験結果より、本発明のトウモロコシ降圧活性ペプチドが有意な降圧作用を有し、降圧薬および機能性食品の原料を開発するために使用することができ、開発に大きな見込みがあることが示されている。