"HPLC分析による総ピーク面積に対するイソα酸、α酸およびβ酸のピーク面積の割合が20以下である、ホップ酸化反応産物。請求項1に記載の酸化反応産物を水性有機媒体で抽出して得られる、ホップ由来抽出物。請求項1に記載の酸化反応産物または請求項2に記載の抽出物を有効成分として含んでなる、脂肪蓄積抑制剤または体重増加抑制剤。請求項1に記載の酸化反応産物または請求項2に記載の抽出物を有効成分として含んでなる、食品添加剤。請求項1に記載の酸化反応産物または請求項2に記載の抽出物が添加されてなる、食品。ホップを酸化処理することを含んでなる、請求項1に記載のホップ分解産物の製造方法。前記酸化処理がホップを加熱することにより行われる、請求項6に記載の製造方法。前記加熱の温度が60~100°Cである、請求項7に記載の製造方法。請求項1にホップ分解産物を水性有機媒体で抽出することを含んでなる、請求項2に記載のホップ由来抽出物の製造方法。前記水性有機媒体がエタノールである、請求項9に記載の製造方法。ホップを酸化処理し、所望により、前記酸化処理により得られるホップ酸化反応産物を水性有機媒体で抽出することを含んでなる、請求項3に記載の脂肪蓄積抑制剤または体重増加抑制剤の製造方法。脂肪蓄積抑制剤または体重増加抑制剤の製造における、請求項1に記載の酸化反応産物または請求項2に記載の抽出物の使用。食品添加剤の製造における、請求項1に記載の酸化反応産物または請求項2に記載の抽出物の使用。これまでにホップ由来のイソフムロン類、フムロン類およびルプロン類にPPARアゴニスト作用があり、この作用を介して脂質代謝改善機能があることが報告されている特許第4503302号公報。しかし、これらのホップ由来成分には強烈な苦味があり、飲食品や医薬品へ応用する際にはその苦味の抑制が課題となっていた。本発明者らは、ホップを酸化処理して得られた分解産物がそのフムロン類等の含量を大幅に低下させているにも関わらず、脂肪蓄積抑制作用および体重増加抑制作用を有すること、該分解産物の苦みが大幅に低減されることを見出した。本発明はこれらの知見に基づくものである。そして、本発明によれば、HPLC分析による総ピーク面積に対するイソα酸、α酸およびβ酸のピーク面積の割合が20以下である、ホップ酸化反応産物が提供される。また、本発明によれば、ホップ酸化反応産物を含んでなる食品添加剤以下、単に本発明の食品添加剤ということがある、およびそれらを添加してなる食品以下、単に本発明の食品ということがあるが提供される。また、本発明によれば、また、ホップ酸化反応産物を有効成分として含んでなる、脂肪蓄積抑制剤または体重増加抑制剤以下、単に本発明の抑制剤ということがあるが提供される。また、本発明によれば、更に、ホップを酸化処理し、所望により酸化反応産物を抽出することを含んでなる、本発明の抑制剤の製造方法が提供される。また、本発明によれば、更に、ホップ酸化反応産物をヒトを含む哺乳動物に投与することを含んでなる、脂肪蓄積の抑制方法および体重増加の抑制方法が提供される。また、本発明によれば、脂肪蓄積抑制剤または体重増加抑制剤の製造のためのホップ酸化反応産物の使用が提供される。本発明のホップ酸化反応産物またはその抽出物は脂肪蓄積抑制作用および/または体重増加抑制作用を有するとともに、異性化されたホップのような強烈な苦味がない。従って、本発明の食品や本発明の抑制剤は脂肪蓄積抑制や体重増加抑制などの生理活性を期待しつつ、苦味のマスキング手段を講じずにそのまま摂取できる点で有利である。以下の例に基づいて本発明を具体的に説明するが、本発明はこれらの例に限定されるものではない。実施例1:ホップペレット酸化反応産物の調製ホップとしては、ペレット状のハラタウペルレ種HPE種を用いた。このホップをミルで粉砕し、80°Cで24時間まで加熱反応時間を保持した。得られた生成物について以下のように前処理を実施した後、HPLC分析に供した。反応物分析前処理採取した生成物を10wvとなるようエタノールに添加し、50°Cで1時間抽出を行った。得られた抽出液をエタノールで10倍に希釈した。[HPLC構成装置]ホンプ:LC10ADvp×3SHIMADZUデガッサー:DGU20A5SHIMADZUシステムコントローラー:CBM20ASHIMADZUオートサンプラー:SIL20ACHTSHIMADZUカラムオーブン:CTO20ACSHIMADZUフォトダイオードアレー検出器:SPDM20ASHIMADZU波形解析ソフトウェア:LCSolutionSHIMADZU[HPLC条件]カラム:AlltimaC1821mmIDx100mm粒子径3μm流速:06mLmin溶出溶媒A:水リン酸、100002EDTA002溶出溶媒B:アセトニトリル溶出溶媒C:水注入量:3μLカラム温度:40°C検出波長:270nm酸化反応産物、イソα酸、α酸、β酸グラジエントプログラム:上記分析条件にて、検出波長270nmで検出される全ピークの合計面積値mAUmin中のα酸、β酸、イソα酸のピークの面積値の比率を算出した。波形解析にあたって、溶媒ピークやインジェクションショックによる負ピークが生じる領域は解析除外領域とした。上記実施例1の生成物の分析時のHPLCクロマトグラムを図1Aに示す。また、図1Bに拡大図を示し、30分以降の解析時に用いた面積を斜線で示す。酸化処理を行わなかった際の分析時クロマトグラムを図2Aに示す。また、図2Bに拡大図を示した。α酸、β酸のピークについては、この分析時のα酸a1、a2、a3、β酸b1、b2の保持時間を基準とした。a1、a2、a3は順にコフムロン、フムロン、アドフムロンであり、b1、b2はそれぞれコルプロン、ルプロンおよびアドルプロンである。各分析サンプルにおける検出波長270nmで検出される全ピークの合計面積値mAUmin中のα酸、β酸、イソα酸のピークの面積値の比率は表2の通りであった。上記結果から明らかなように、酸化処理して得られた生成物ではα酸、β酸およびイソα酸の全ピークに対する比率がかなり低下しており、未処理に比べα酸、β酸およびイソα酸が90程度減少していた。また、酸化反応によりα酸、β酸およびイソα酸以外のピークが新たに出現していた。すなわち図1において矢印Aで分画される範囲のピークα酸、β酸のピークを除くがこれに該当する。検出波長270nmで検出される全ピークの合計面積値mAUmin中の矢印Aで分画される範囲のピークα酸、β酸のピークを除くの面積値の比率は表3の通りであった。上記分析方法にてホップまたは上記生成物に含まれるα酸、β酸、イソα酸の定量分析が可能である。定量分析用の標準品としては、α酸、β酸、イソα酸は、例えばAmericanSocietyofBrewingChemistsASBCから入手可能なInternalCalibrationStandardsのICE2、ICSI2、ICST2などが利用できる。実施例2:ホップの酸化反応産物の抽出不快臭の除去実施例1の生成物は酸化反応に起因する脂肪酸等を含んでおり、摂取する態様によっては、この不快臭のため快適な摂取が困難であると考えられた。そこで、不快臭の除去を検討した。実施例1の生成物100gにエタノールを1Lとなるように添加し、55°Cで1時間攪拌し、エタノール抽出物を得た。次いで、ろ過により抽出残渣を除去し、濃縮を行うことで22gの深緑色固形物を得た。上記抽出による実施例2の抽出物深緑色固形物、および実施例1の生成物コントロールの不快臭について、以下の方法で6人の社内パネラーを用いて官能評価を行った。実施例2の抽出物またはコントロールを10mMクエン酸バッファー溶液pH5.5程度に添加し、1時間煮沸して溶解させた。この溶液をろ過し、実施例2の抽出物またはコントロールがイソフムロン換算で約50ppm含まれるよう調製した溶液にて評価を実施した。官能評価は、数秒にわたり溶液の臭気を確認し、評価基準に従い評価した。結果は6名の評価点の平均値として求め、以下の基準に従って記号化した。[評価基準][評価結果]その結果、実施例2の抽出物はコントロールに対して不快臭が低減しおり、飲用に適した香味であることが示唆された。実施例3:苦味官能評価実施例2の抽出物について、その苦味を官能評価にて比較した。[苦味官能評価の評価方法]実施例2の抽出物および未酸化ホップペレットより実施例2と同様の方法で抽出して得られた生成物コントロールの苦味について、以下の方法で6人の社内パネラーを用いて官能評価を行った。抽出物については10mMクエン酸バッファーpH5.5中で煮沸溶解し、実施例2の抽出物またはコントロールがイソフムロン換算で50ppmとなるように希釈して官能評価に用いた。官能評価はサンプル数mLを口に含み、評価基準に従い評価した。結果は6名の評価点の平均値として求めた。[評価基準][評価結果]その結果、実施例2の抽出物について苦味が低減しており、飲用に適した香味であることが示唆された。実施例4:酸化反応温度、時間の検討実施例1の方法に従い、ホップペレットを60°Cまたは80°Cで酸化処理し、経時的に生成物を採取しHPLCにて測定し、ピーク全体の面積に対するα酸、β酸およびイソα酸のピーク面積の合計のピーク面積比1、および、ピーク全体の面積に対するフムロン類、ルプロン類およびイソフムロン類以外のピーク面積のピーク面積比2を算出した。また、実施例3に記載された方法に従って官能評価を実施した。結果は以下の通りであった。その結果、苦味スコアはピーク面積比とほぼ相関しており、反応温度時間に比例し、加熱温度が上昇するとピーク面積比2が80以上ピーク面積比1が20以下に到達する時間は短縮され、効率よく苦味の低減が図れることが明らかとなった。実施例5:低温での酸化処理検討実施例1の方法に従い、ザーツ種のホップを4°Cで5年間保管し、酸化処理を行った。得られた生成物について、HPLC分析に供した。上記実施例5の生成物の分析時のHPLC分析クロマトグラムを図3に示す。ホップの品種や反応温度によらず、同様の生成物を得られることが確認された。実施例6:生理作用評価サンプルの調製本発明による生成物の生理作用を評価するために、以下の方法によりサンプルの調製を行った。実施例1および2記載の方法に従い、ホップを60°C32時間、48時間、120時間加熱反応させて抽出物を得た。このように調製した抽出物および実施例2の抽出物を生理作用評価に用いた。また、各抽出物を希釈してHPLC分析に供し、ホップ酸化反応産物が抽出されていることを確認した図4。実施例7:脂肪酸蓄積等への影響の評価実施例2の抽出物について、マウスを用いて生理評価を実施した。1群6匹の5週齢雄性C57BL/6Jマウス日本チャールズリバーを、AIN93G飼料にて1週間程度馴化後、高脂肪食群、高脂肪食に実施例2の抽出物を固形分量0.5W/Wとなるように添加した群の計2群を設定した。投与開始時より毎週体重を測定し、37日間まで投与を継続し、解剖時に皮下脂肪重量及び腎周囲脂肪重量を測定した。その結果、高脂肪食群に対し、実施例2の抽出物0.5添加群において有意な体重増加の抑制作用が認められ図5:体重;平均値±標準偏差;:P<0.05コントロール群と比較、有意な皮下脂肪重量の低下および腎周囲脂肪重量の低下傾向P=0.05も認められた図6、図7:それぞれ皮下脂肪重量、腎周囲脂肪重量;平均値±標準偏差;:P<0.05コントロール群と比較。以上の結果から、ホップ酸化反応産物は脂肪蓄積抑制作用を持つことが確認された。一般的に脂肪蓄積抑制作用のメカニズムの1つとして試験食中の脂質吸収抑制が考えられる。そこで次に、実施例2の抽出物の脂質吸収抑制作用を評価するために、中性脂肪の吸収に大きく寄与する膵リパーゼの活性阻害作用を評価した。実施例8:ホップ酸化反応産物の膵リパーゼ活性阻害作用の評価実施例2の抽出物の膵リパーゼ活性阻害作用を評価した。膵リパーゼ活性の測定はすでに報告された方法J.Agric.FoodChem.,53,4593-45982005に従って以下の通りに実施した。測定試薬には4-methylumbelliferyloleateシグマアルドリッチを使用し、酵素源にはブタ膵リパーゼシグマアルドリッチを、1検体当たり10U使用した。実施例2の抽出物は4ジメチルスルホキシドを用いて所定の固形分濃度に溶解し、試験に供した。活性は4ジメチルスルホキシドのみを添加した場合に得られる酵素活性を100として表示した。その結果、ホップ酸化反応産物は膵リパーゼ活性を阻害し、終濃度82.8μg/mlで添加した時に約50までリパーゼ活性が低下した図8:ホップ酸化反応産物の膵リパーゼ阻害活性;平均値±標準偏差。以上の結果から、実施例2の抽出物が膵リパーゼ活性の阻害作用を持つことが確認された。次に、実施例6で得られた抽出物について同様に膵リパーゼ活性阻害作用を評価した。測定の結果、実施例6で得られた抽出物はすべて膵リパーゼ活性を阻害し、固形分の終濃度37.9~133.3μg/mlで添加したときに約50までリパーゼ活性が低下した。また、実施例6で得られた抽出物の50膵リパーゼ活性阻害濃度IC50は図9に示される通りであった。以上の結果から、実施例6で得られた抽出物は全て膵リパーゼ活性の阻害作用を持つことが確認された。"