AlliospirosideA及び/又はAlliospirosideAの25位立体異性体R体を活性成分とする、植物病原菌に対する抗菌剤。植物病原菌が、炭そ病菌Colletotrichum属菌であることを特徴とする、請求項1に記載の植物病原菌に対する抗菌剤。植物病原菌が、イネいもち病菌Magnaporthegrisea又はイネもみ枯れ病菌Burkholderiaglumaeであることを特徴とする、請求項1に記載の植物病原菌に対する抗菌剤。AlliospirosideA及び/又はAlliospirosideAの25位立体異性体R体を活性成分とする、植物病原菌の増殖阻害剤。しかしながら、AlliospirosideAが、植物病原菌に対する抗菌活性を有することは未だ報告されていない。また、上記した通り、ネギAllium属植物であるシャロットAlliumcepaaggregatumgroupから抽出されるサポニン類が、糸状菌の1種であるFusarium属不完全菌に対して抗菌活性を示すことは知られているが、抽出される多数種のサポニンの中でどのサポニンが抗菌活性を有するのかは不明であった。したがって、本発明は、シャロットから抽出される多数種のサポニンの中でどのサポニンが抗菌活性を有するのかを特定し、植物病原菌に対してより強い抗菌活性を有する、農業用及び家庭用作物の抗菌剤を提供することを目的とする。本発明者らは、上記課題を解決するため、鋭意検討した結果、シャロットから抽出される多数種のサポニンのうち、AlliospirosideA及び/又はAlliospirosideAの25位立体異性体が、野菜、果樹及び鑑賞植物等の難防除病害の原因菌である炭そ病菌Colletotrichum属菌等に対して特に強い抗菌活性、殺菌活性及び増殖抑制活性を示すことを見いだし、本発明を完成した。すなわち、本発明は、1AlliospirosideA及び/又はAlliospirosideAの25位立体異性体を活性成分とする、植物病原菌に対する抗菌剤、2植物病原菌が、炭そ病菌Colletotrichum属菌であることを特徴とする、前記第1項に記載の植物病原菌に対する抗菌剤、3植物病原菌が、イネいもち病菌Magnaporthegrisea又はイネもみ枯れ病菌Burkholderiaglumaeであることを特徴とする、前記第1項に記載の植物病原菌に対する抗菌剤に関する。また、本発明は、4AlliospirosideA及び/又はAlliospirosideAの25位立体異性体R体を活性成分とする、植物病原菌の増殖阻害剤に関する。本発明の抗菌剤は、天然物であるシャロット由来であり、農作物に多大な被害を与える炭そ病等の植物病原菌に対して強い増殖抑制効果を示す。したがって、本発明の抗菌剤は、化学農薬に頼らない減農薬栽培に有効で環境への負荷が少なく、かつ、従来の抗菌剤や各種サポニン類よりも抗菌殺菌効果が格別顕著に優れた農業用及び家庭用作物の抗菌剤とすることができる。また、シャロットからの抽出物中で抗菌活性が高い成分AlliospirosideA及び/又はAlliospirosideAの25位立体異性体の含有量を評価することにより、有用シャロット種の評価が簡便にできるようになる。本発明において、抗菌剤とは、菌に対して抗菌効果を示すものに加えて、菌に対する殺菌効果を示す殺菌剤をも含むものである。本発明の抗菌剤の活性成分であるAlliospirosideA3hydroxyspirost5en1yl2OαLarabinopyranosideは、次に示す構造式で表される化合物である。また、本発明の抗菌剤の活性成分であるAlliospirosideAの25位立体異性体は、AlliospirosideAの25位のメチル基が、R体である3hydroxyspirost5en1yl2OαLarabinopyranosideであり、次に示す構造式で表される化合物である。本発明の抗菌剤の活性成分であるAlliospirosideA及びAlliospirosideAの25位立体異性体は、それぞれ単独で用いてもよいし、両者の混合物として用いてもよい。本発明の抗菌剤が、植物病原菌に対し、より強い抗菌活性を有するためには、AlliospirosideA及びAlliospirosideAの25位立体異性体の混合物を活性成分として用いるのが好ましい。AlliospirosideA及びAlliospirosideAの25位立体異性体の混合物を活性成分として用いる場合、両者の混合比は、本発明の抗菌剤が所望の抗菌活性を示す限り特に限定されないが、約1:10~約10:1が好ましく、約1:5~約5:1がより好ましく、約3:1が最も好ましい。本発明の抗菌剤の活性成分であるAlliospirosideA及びAlliospirosideAの25位立体異性体は、例えば、ネギAllium属植物であるシャロット等から、下記する方法により抽出精製する工程を経て得ることができる。ここで、本発明に用いられるシャロットとしては、ネギAllium属植物のうち、以下の特徴、すなわち染色体の基本数が8で、管状の葉身部を持ち、鱗茎が発達し、垂直方向に短い茎を有するものSubgenusCepaであって、花色は緑色がかった白色で、葉は出始めのうち扁平または半円筒状で主に4~9枚、広がりのある花被片を持ち、花被片の中肋に沿って緑色を呈する繊維が走り、蜜分泌腺はポケット状で、花茎の下半分には風船状の膨らみを有するCepaallianceという特徴を持ち、かつ分球性を示すaggregatumgroupネギ属植物Alliumcepaaggregatumgroup等が代表的に挙げられるFritschRMFriesenN2002EvolutionDomesticationandtaxonomyinAlliumCropScienceRecentAdvances530CABInternational参照。AlliospirosideA及びAlliospirosideAの25位立体異性体を溶媒抽出する方法としては、本発明の抗菌剤の活性成分であるAlliospirosideA及び/又はAlliospirosideAの25位立体異性体を含むサポニンが収率良く得られる方法であれば特に限定されないが、例えば、以下に示す方法により溶媒抽出するのが好ましい。1天然物原料例えば、シャロット等を破砕又は磨砕する。2破砕磨砕した原料に、脂肪族炭化水素系溶媒例えば、ヘキサン等を加えて、同溶媒に溶解性を有する物質を除去する。3脂溶性物質を除去した残留物に、アルコール溶媒例えば、メタノール、エタノール、プロパノール、ブタノール等、好ましくはメタノール等を加えて、同溶媒に溶解性を有する物質を抽出する。4前記抽出物から乾燥等によりアルコール溶媒を除き、残留物を水に溶解させる。ここに、水と分離できる脂肪族炭化水素系でない溶媒例えば、ブタノール等を加えて、同溶媒に溶解性の物質を水溶液から分離抽出する。5吸引乾燥等により、溶媒を除去し、粗サポニンを得ることができる。AlliospirosideA及びAlliospirosideAの25位立体異性体を含む粗サポニンを精製する方法としては、本発明の抗菌剤の活性成分であるAlliospirosideA及び/又はAlliospirosideAの25位立体異性体を含むサポニンが収率良く得られる方法であれば特に限定されないが、例えば、以下に示す方法により精製するのが好ましい。1得られた粗サポニンに対し、薄層クロマトグラフィーTLCを行う。展開溶媒としては、例えば、クロロホルム:メタノール:水=約6:3:0.5等を用いることができる。2紫外線UV照射波長:約254nmする、又は、p-アニスアルデヒド試薬やEhrlich’s試薬を、前記薄層に噴霧して発色させることにより、サポニン画分フラクションのスポットを確認する。3サポニン画分のスポットの部分を掻き取る。4掻き取った各サポニン画分に溶媒例えば、エタノール等を加えて溶解させ、遠心分離好ましくは、真空乾燥下することにより残渣を除去し、抽出した溶媒から自然乾燥等することにより、精製サポニンを得ることができる。得られた精製サポニンに対し、例えば、下記する実施例に記載する抗菌活性試験方法等を用いて、植物病原菌に対し強い抗菌活性を有する精製サポニンの画分フラクションを特定することにより、AlliospirosideA及び/又はAlliospirosideAの25位立体異性体を含む画分を得ることができる。また、その画分を質量分析法MSや核磁気共鳴法NMR等により、AlliospirosideA及び/又はAlliospirosideAの25位立体異性体を同定することができる。本発明の抗菌剤は、植物病原菌に対する増殖抑制効果を示すものである。ここで、植物病原菌としては、植物病原糸状菌及び植物病原細菌等が挙げられる。本発明の抗菌剤が増殖抑制効果を示す植物病原糸状菌としては、例えば、Colletotrichum属菌が挙げられる。Colletotrichum属菌は、炭そ病の原因菌として知られている。炭そ病の症状の特徴は、葉、葉柄、つる及び果実等あらゆる部位で発生するもので、葉では径3~20mm程度の縁が不定形の円形の病斑が生じる。病斑の縁は褐色を呈し、中央部は退色して破れやすくなる。葉柄では淡褐色の紡すい形のくぼんだ病斑が生じ、縦に小さな亀裂が入ることもある。果実では、最初油浸状の小さな斑点が生じ、やがて拡大し、くぼみ、鮭肉色の粘着物が形成され、亀裂が入る。病斑部に小さな黒点が形成されることもある。このように、植物が炭そ病に感染した場合、農産物としての品質が著しく劣化し、商品価値が低下することになる。本発明の抗菌剤が増殖抑制効果を示すColletotrichum属菌以下、Cと略するとしては、例えば、イチゴ、リンゴ及びマンゴー等が感染するCgloeosporioides、アブラナ科植物が感染するCdestructivum、サクランボ及びリンゴ等が感染するCacutatum、イネ科植物が感染するCgraminicola等が挙げられる。特に、本発明の抗菌剤は、Cgloeosporioidesに対して強い増殖抑制効果を示す。その他、本発明の抗菌剤が増殖抑制効果を示す植物病原糸状菌としては、例えば、Sclerotiumcepivorumユリ類黒腐菌核病、Magnaporthegriseaイネいもち病菌、Botrytiscinereaイチゴ灰色かび病、Thanatephoruscucumerisテンサイ根腐病等が挙げられる。特に、本発明の抗菌剤は、Magnaporthegriseaイネいもち病菌に対して強い増殖抑制効果を示す。本発明の抗菌剤が増殖抑制効果を示す植物病原細菌としては、例えば、Ralstoniasolanacearumナス科青枯れ病菌、Clavibactermichiganensisトマトかいよう病菌、Erwiniacarotovoraハクサイ軟腐病菌、Burkholderiaglumaeイネもみ枯れ病菌、Agrobacteriumrhizogenesメロン毛根病菌、Pseudomonasfluorescens蛍光シュードモナス細菌等が挙げられる。特に、本発明の抗菌剤は、Burkholderiaglumaeイネもみ枯れ病菌に対して強い増殖抑制効果を示す。本発明の抗菌剤は、野菜、果樹及び鑑賞植物等の農業用家庭用作物が上記植物病原菌に感染するのを予防することができる。また、本発明の抗菌剤は、植物病原菌に感染した農業用家庭用作物の殺菌剤とすることもできる。本発明の抗菌剤中のAlliospirosideA及び/又はAlliospirosideAの25位立体異性体の濃度は、植物病原菌に対する抗菌殺菌活性を示す限り特に限定されないが、好ましくは約10~約50000ppm、より好ましくは約10~約20000ppmである。本発明の抗菌剤は、植物病原菌に対して抗菌活性を有する限り剤形は特に限定されないが、活性成分であるAlliospirosideA及び/又はAlliospirosideAの25位立体異性体に、水、アルコール類例えば、メタノール、エタノール等、その他所望の補助剤例えば、ジメチルスルホキシド等を混合することによって溶液の形態として用いることが好ましい。本発明の抗菌剤は、野菜、果樹及び鑑賞植物等の農業用家庭用作物のあらゆる部位に接種、塗布、散布等することにより、作物が植物病原菌に感染するのを予防することができる。また、植物病原菌に感染した農業用家庭用作物の部位に接種、塗布、散布等することにより、植物病原菌を殺菌することができる。本発明の抗菌剤は、植物保護剤、防菌防黴剤、連作障害低減のための土壌改善剤、貯蔵市場病害の予防のための食品貯蔵剤とすることもできる。また、本発明の抗菌剤は、野菜工場における植物病原菌の汚染防止剤、無菌施設における環境維持剤とすることもできる。さらに、肥料に本発明の抗菌剤を含有させてもよい。本発明を更に詳しく説明するため、以下に実施例を示すが、当然のことながら、本発明はこれらに限定されるものではない。実施例1.サポニンの抽出及び精製ベトナム産シャロットAlliumcepaLAggregatumgroupの球根を洗浄し、可食部、球根外皮外皮、球根基部盤茎及び根組織に分け、70°Cで乾燥した。乾燥サンプルを粉砕し、ヘキサン抽出を行った。抽出残渣に70メタノールを加え超音波処理することによりメタノール抽出した後、ろ過を行って、ろ液を回収した。回収したろ液メタノール画分をナスフラスコに入れ、減圧留去した。ナスフラスコに残った溶液をイオン交換水で洗い、メスシリンダーに移して一定量にフィルアップした。分液漏斗にフィルアップした溶液を移し、ブタノールを等容量加え、軽く振蕩した後約6時間静置した。2層に分かれた後、上層ブタノール層をナスフラスコに移し、減圧留去した。留去後、ナスフラスコ壁面の付着物粗サポニン画分を80エタノールで洗い溶かし、あらかじめ質量を量ったエッペンドルフチューブに移し自然乾燥した。得られた乾燥サポニン数10mg量を80エタノールに溶解後、TLCプレートにスポットし、展開液クロロホルム:メタノール:水=6:3:05を入れた展開槽中で展開した。展開後、UV照射2537nm下で各フラクションの位置を確認した。各フラクションを含むシリカゲルをスパチュラで削り取り、エッペンドルフチューブに移した。80エタノールを加えてサポニンを溶出した後、真空乾燥遠心処理20°C、12000rpm、10分間によってエタノールを除去した。処理後、上澄みを回収し真空乾燥遠心処理により、乾燥サポニンフラクションを得た。乾燥サポニンフラクションを再度80エタノールに溶解し、TLCで展開後、pアニスアルデヒド試薬による発色を行い、サポニンのスポットを確認した図1a。乾燥サポニンフラクションを30μgμlになるように80エタノールで調製し、逆相薄層TLCプレートにスポットし、展開液メタノール:水=45:55を入れた展開槽中で展開した二次元TLC。展開後、UV照射254nm下で各画分に含まれるサポニンの数を確認した図1b。実施例2.植物病原糸状菌に対する抗菌活性試験上記実施例1で得られた各乾燥サポニンフラクションフラクション1~10を80エタノールに溶解し、各100μgを溶解したポテトデキストロースPD寒天培地3mlを加えて混釈した。固化後、PD寒天平板培地に培養した供試菌コロニーからコルクボーラーオートクレーブ滅菌済みで抜き取った菌糸プラグ直径5mmを平板培地の中央に置いた。コントロール対照区として、サポニンを含まないPD寒天培地を用いた。コントロールCのコロニーがシャーレ全体に広がるまで各培地を25°Cで培養し、コロニーのサイズを測定した。植物病原菌の代表例として、イチゴ炭そ病菌Cgleoeosporioidesに対する増殖抑制効果を図2及び図3に示す。図2は、各シャーレの写真を示し、図3は、各サポニンフラクションのCgleoeosporioidesに対する増殖抑制率を示す。ここで、増殖抑制率とは、上記サポニンフラクションを含まない培地上で生育したコントロール対照区の菌叢直径に対して、抗菌活性成分を含むサポニンフラクションを含有培地で菌が生育した菌叢直径から到達できなかった分を、増殖抑制率とする。すなわち、増殖抑制率は、次式で表される。例えば、ある菌のコントロールの直径が8cmで、サポニンフラクションを含有培地での菌直径が2cmであった場合、増殖抑制率は、8cm-2cm/8cm×100=75となる。図2及び図3から明らかなように、サポニンフラクション5がイチゴ炭そ病菌Cgleoeosporioidesに対して強い抗菌活性を示し、シャロット盤茎における主要サポニンであることが判明した。実施例3.抗菌サポニンの構造の同定イチゴ炭そ病菌Cgleoeosporioidesに対して強い抗菌活性を示したサポニンフラクション5の構造解析を行った。結果を以下に示す。本化合物は、白色粉末として得られ、negativeFABMSでは、mz707にMH-に由来する分子イオンピークを示した。その1H-NMRスペクトルでは、d065、104、106に27位、21位のsecondaryメチル基、d083、142に18位、19位のtertiaryメチル基に由来するシグナルを示した。なお、27位d065104のケミカルシフトと積分値より25位の立体異性体の割合はR体:S体=約1:3と推測された。また、d469、632に2本のアノマープロトンanomericprotonに由来するシグナルが見られ、さらに、d555に二重結合に由来する6位のプロトンのシグナルが観測された。次に、13C-NMRのデータを観測すると、アグリコンaglycone部は、dihydroxyspirost5enneoruscogeninC127836537386818438013952124693237330750344286240040284013567732348117627716671501423814821097226332614274965001624とdihydroxyspirost5enruscogeninC127836537386818438013952124693237330750344286240040284013567732348109629416671501419114981092431772921305566781727の混合物で、糖鎖部は共通で2OαLarabinopyranosiderhamnopyranposeC161016572527255741969391898arabinopyranoseC15100437509759070076734と一致した。以上のデータより、本化合物は、3hydroxyspirost5en1yl2OαLarabinopyranosideと3hydroxyspirost5en1yl2OαLarabinopyranosideの約1:3の混合物と同定したOnoMShoyamaKNoharaTShoyakugakuZasshi42135142。すなわち、サポニンフラクション5の化合物は、次に示すAlliospirosideA25S体とその立体異性体25R体の混合物混合比=約3:1であった。以下の実施例において、上記AlliospirosideA25S体とその立体異性体25R体の混合物を用い、これをAlliospirosideAと称する。実施例4.各種植物病原糸状菌に対する抗菌活性試験AlliospirosideAを100ppmになるようにポテトデキストロースPD寒天培地に混釈した。PD寒天培地上で生育した各種植物病原菌をコルクボーラーで打ち抜いて得た菌ディスクを混釈培地上の中心に置いた。コントロールAlliospirosideAを含まないもののPD寒天培地での菌のコロニーが培地全体に広がった時に試験を終えた。試験に供した植物病原糸状菌は、イチゴ、リンゴ、マンゴーが感染する炭そ病菌CgloeosporioidesCglo、サクランボ、リンゴが感染する炭そ病菌CacutatumCacu、イネ科植物が感染する炭そ病菌CgraminicolaCgraアブラナ科植物が感染するCdestructirumCdes、イネいもち病菌MagnaporthegriseaMgriとした。さらに、植物病原糸状菌であるFusarium属菌として、FusariumoxysporumfspbatatasFoxfspbatatas、FusariumoxysporumfspmelongenaeFoxfspmelongenae、FusariumoxysporumspcepaeFoxfspcepae、Fusariumsolaniも併せて試験に供した。AlliospirosideAの各種植物病原糸状菌に対する増殖抑制率を図4に示す。図4から明らかなように、AlliospirosideAは、濃度100ppmで各種炭そ病菌及びイネいもち病菌の増殖を顕著に抑制した。このことから、AlliospirosideAは、各種炭そ病菌及びイネいもち病菌に対し優れた抗菌活性を示すことが分かった。実施例5.サトウキビ炭そ病菌Cgraminicolaに対する抗菌活性試験サトウキビ炭そ病菌Cgraminicolaに対する抗菌活性試験を行った。AlliospirosideAを10、30、50、70および100ppmになるようにPD寒天培地に混釈した。コントロールはPD寒天培地を用いた。PD寒天培地上で生育したサトウキビ炭そ病菌Cgraminicolaをコルクボーラーで打ち抜いて得た菌ディスクを混釈培地上の中心に置いた。コントロールのPD寒天培地での菌のコロニーが培地全体に広がった時に試験を終えた。AlliospirosideAの濃度0~100ppmに対するCgraminicolaの増殖抑制率を図5に示す。図5から明らかなように、AlliospirosideAは、サトウキビ炭そ病菌Cgraminicolaを濃度6ppmで50増殖抑制し、濃度30ppmで100増殖抑制した。このことから、AlliospirosideAは、サトウキビ炭そ病菌Cgraminicolaに対しても優れた抗菌活性を示すことが分かった。実施例6.シロイヌナズナへの炭そ病菌Cdestructivumの接種試験アブラナ科植物炭そ病菌CdestructivumをPD液体培地で25°Cで7日間振とう培養し、胞子を回収した。胞子懸濁液は10×106個mlになるように調整した。AlliospirosideAを10、50および100ppmになるように胞子懸濁液に加えて混和し、10μlをアブラナ科植物の代表例であるシロイヌナズナの葉5枚にそれぞれ滴下した。またポジティブコントロールは胞子懸濁液、ネガティブコントロールは滅菌水を10μlをシロイヌナズナの葉5枚にそれぞれ滴下した。接種後、25°Cで5日間放置し、葉の炭そ病斑を確認した。図6に試験に供したシロイヌナズナの葉の写真、図7にそれぞれのシロイヌナズナの病斑数を示す。図6及び図7から明らかなように、AlliospirosideA図中、ALと略するは、濃度50ppmで病斑数を半減させた。このことから、AlliospirosideAは、アブラナ科植物の炭そ病菌Cdestructivumに対して優れた発病抑制効果を示すことが分かった。実施例7.AlliospirosideAの植物病原糸状菌の胞子に対する殺菌活性試験イチゴ炭そ病菌Cgloeosporioides、アブラナ科植物炭そ病菌Cdestructivum、およびネギ萎ちょう病菌FoxysporumfspcepaeをPD液体培地で25°Cで7日間振とう培養し、胞子を回収した。回収した胞子は10×107個mlになるように調整した。胞子懸濁液は2mlのエッペンドルフチューブに1mlずつ加え、そこに、AlliospirosideAを50、100、200および500ppmになるように混合し25°Cで24時間、静置した。コントロールは滅菌水のみとした。生死判別はエバンスブルー染色法により行った。図8に示したCgleoeosporioidesの胞子の顕微鏡写真において、エバンスブルーで染色されたものは死菌である。図9に示した死菌率は100個の胞子をカウントし算出した。図8及び図9から明らかなように、AlliospirosideAは500ppmでイチゴ炭そ病菌Cgleoeosporioidesの胞子の約90を殺した。このことから、AlliospirosideAは、イチゴ炭そ病菌Cgleoeosporioidesの胞子に対して優れた殺菌効果を示すことが分かった。実施例8.AlliospirosideAの植物病原糸状菌の発芽菌糸に対する殺菌活性試験イチゴ炭そ病菌Cgloeosporioidesおよびネギ萎ちょう病菌FoxysporumfspcepaeをPD液体培地で25°Cで7日間振とう培養し、胞子を回収した。回収した胞子10×106個mlになるように調整し、チューブに1mlずつ加えた。そこにPD液体培地を2ml加え、25°Cで3日間振とう培養した。3日間培養後、このチューブにAlliospirosideAを500ppmになるように加え、2時間後と4時間後にエバンスブルー染色法により菌糸の生死判別を行った。コントロールはPD液体培地のみとした。図10に示したCgloeosporioidesの発芽菌糸の顕微鏡写真において、エバンスブルーで染色されたものは死菌である。図11に示した死菌率は100個の発芽菌糸をカウントし算出した。図10及び図11から明らかなように、AlliospirosideAは、Cgloeosporioidesの発芽菌糸に対しても500ppmで100の殺菌活性を示した。また、AlliospirosideAは、Foxysporumfspcepaeの発芽菌糸に対して1000ppmで80の殺菌活性を示した。実施例9.AlliospirosideAの植物病原細菌に対する抗菌活性試験イネもみ枯細菌病菌BurkholderiaglumaeをLB液体培地で24時間、25°Cで振とう培養した。培養後、2mlの菌液をLB寒天培地に混ぜ固化した。菌液を混ぜたLB寒天培地にコルクボーラーで等間隔に穴をあけた。そこに粗サポニン、AlliospirosideAおよびAlliospirosideAの酸分解産物を100μg15μl滴下した。コントロールとして80エタノールを15μl滴下した。25°Cで24時間インキュベート後、形成された細菌生育阻止円を確認した。図12から明らかなように、AlliospirosideAは100μgでイネもみ枯れ病菌Burkholderiaglumaeに対して効果的に増殖抑制した。