ユリの葉にモザイク症状を生じさせないか、または軽微なモザイク症状しか生じさせないユリモットルウイルスの弱毒ウイルス。配列番号1の塩基配列但し、配列中のTはUである。で表されるRNAを有する、請求項1に記載のユリモットルウイルスの弱毒ウイルス。下記で示されるペプチドを有する、請求項1または2に記載のユリモットルウイルスの弱毒ウイルス。1配列番号7のアミノ酸配列で示されるペプチド;2配列番号7のアミノ酸配列の1または数個のアミノ酸が欠失、付加、および/または置換されたアミノ酸配列で示されるペプチド。配列番号1の塩基配列、または配列番号1の塩基配列に相補的な塩基配列を含む核酸但し、核酸がRNAである場合には、塩基配列中のTはUである。。請求項1~3のいずれか1項に記載のユリモットルウイルスの弱毒ウイルスをユリに接種する、ユリモットルウイルス病の防除方法。請求項1~3のいずれか1項に記載のユリモットルウイルスの弱毒ウイルスをユリに接種する、ユリモットルウイルス抵抗性植物の作出方法。請求項1~3のいずれか1項に記載のユリモットルウイルスの弱毒ウイルスに感染したユリを、リン片繁殖または組織培養によって繁殖させる、ユリモットルウイルス抵抗性植物の繁殖方法。請求項1~3のいずれか1項に記載のユリモットルウイルスの弱毒ウイルスを接種して得られるユリモットルウイルス抵抗性植物。請求項1~3のいずれか1項に記載のユリモットルウイルスの弱毒ウイルスを感染したユリ植物組織。リン片または球根である、請求項9に記載のユリ植物組織。本発明が解決しようとする課題は、ユリに接種した場合、モザイク症状が軽微かほとんど病徴を現さないユリモットルウイルスの弱毒ウイルスを提供することである。本発明者らは、上記課題を解決するために鋭意検討した結果、LMoVの弱毒株を自然界から分離し、その後選抜することによって得られた弱毒ウイルスにより、LMoVによるユリのモザイク病の防除が可能となることを見いだし、本発明を完成した。すなわち、本発明は以下のとおりである。[1]ユリの葉にモザイク症状を生じさせないか、または軽微なモザイク症状しか生じさせないユリモットルウイルスの弱毒ウイルス。[2]配列番号1の塩基配列但し、配列中のTはUである。で表されるRNAを有する、[1]に記載のユリモットルウイルスの弱毒ウイルス。[3]下記で示されるペプチドを有する、[1]又は[2]に記載のユリモットルウイルスの弱毒ウイルス。1配列番号7のアミノ酸配列で示されるペプチド;2配列番号7のアミノ酸配列の1または数個のアミノ酸が欠失、付加、および/または置換されたアミノ酸配列で示されるペプチド。[4]配列番号1の塩基配列、または配列番号1の塩基配列に相補的な塩基配列を含む核酸但し、核酸がRNAである場合には、塩基配列中のTはUである。。[5][1]~[3]に記載のユリモットルウイルスの弱毒ウイルスをユリに接種する、ユリモットルウイルス病の防除方法。[6][1]~[3]に記載のユリモットルウイルスの弱毒ウイルスをユリに接種する、ユリモットルウイルス抵抗性植物の作出方法。[7][1]~[3]に記載のユリモットルウイルスの弱毒ウイルスに感染したユリを、リン片繁殖または組織培養によって繁殖させる、ユリモットルウイルス抵抗性植物の繁殖方法。[8][1]~[3]に記載のユリモットルウイルスの弱毒ウイルスを接種して得られるユリモットルウイルス抵抗性植物。[9][1]~[3]に記載のユリモットルウイルスの弱毒ウイルスを感染したユリ植物組織。[10]リン片または球根である、[9]に記載のユリ植物組織。本発明によれば、ユリのモザイク病に対して有効かつ効率的なユリモットルウイルスの弱毒ウイルスを提供することができる。以下、本発明を実施するための形態を詳細に説明する。なお。本発明は、以下の実施の形態に限定されるものではなく、その要旨の範囲内で種々変形して実施することができる。1ユリモットルウイルスの弱毒ウイルス本発明のユリモットルウイルスの弱毒ウイルス以下弱毒ウイルスと記載する場合がある。は、ユリの葉にモザイク症状を生じさせないか、または軽微なモザイク症状しか生じさせない弱毒ウイルスである。本発明の弱毒ウイルスは、好ましくは、花に斑入り症状を生じさせないか、または軽微な班入り症状しか生じさせない弱毒ウイルスである。本発明の弱毒ウイルスの一例として、NDMLM1株が挙げられる。NDMLM1株は、以下のようにして得られる弱毒ウイルスである。ユリのピンク花色品種の無症状株からティッシュブロット分析によってLMoVの弱毒株を選抜して、LMoV1211株を得る。さらにLMoV1211株のピンク花色品種における副作用を低減させるためにLMoVの弱毒株を選抜する。例えば、花弁に現われるモザイク症状の違いを利用して、モザイク症状が見られない弱毒株を9世代に渡って選抜して、ピンク花色品種に感染させても副作用の極めて弱いLMoV1219株NDMLM1株を得る。本発明の弱毒ウイルス、好ましくは、本発明の弱毒ウイルスであるNDMLM1株は、配列番号1記載の塩基配列但し、配列中のTはUである。で表されるRNAを有する。本発明の弱毒ウイルスは、配列番号1記載の塩基配列但し、配列中のTはUである。で表されるRNAを有することにより、ユリの葉にモザイク症状を生じさせないか、または軽微なモザイク症状しか生じさせない弱毒ウイルスとして提供でき、斯かる弱毒ウイルスを用いることにより、ユリのモザイク病に対する有効かつ効率的な防除方法を提供する。さらには、本発明の弱毒ウイルスにより、農薬や資材、肥料、種苗費などの経費節減および作物管理労力の節減を図ることができる。また、ウイルス症状が軽微で、球根およびリン片繁殖等の栄養繁殖による増殖を経てもウイルス症状が安定して軽微な、ユリモットルウイルス抵抗性植物を提供することができる。本発明の弱毒ウイルスは、以上のように実用的である。本発明は、弱毒ウイルスから単離される配列番号1の塩基配列を含む核酸をも提供する。該核酸の塩基配列は、本発明の目的に反しない範囲において、1または数個の塩基が欠失、付加、および/または置換された塩基配列であってもよく、配列番号1記載の塩基配列を有するRNAであることが好ましい。ただし、該核酸がRNAである場合には、配列番号1中のTはUである。また、配列番号1記載の塩基配列中には、ATGCU以外にも、それぞれATGCUと等価な塩基を含んでいてもよく、等価な塩基として、ATGCUの塩基部分が置換または修飾された塩基を含んでいてもよい。また、核酸中の糖部分が、リボースまたはデオキシリボースと等価であれば、置換または修飾されていてもよい。本発明は、配列番号1の塩基配列と相補的な塩基配列を含む核酸も提供する。該核酸の塩基配列は、配列番号1の塩基配列と相補的な塩基配列であるが、本発明の目的に反しない範囲において、1または数個の塩基が欠失、付加、および/または置換された塩基配列であってもよく、配列番号1記載の塩基配列に相補的な塩基配列を有するDNAであることが好ましい。なお、配列番号1記載の塩基配列は、ユリの葉にモザイク症状を生じさせないか、または軽微なモザイク症状しか生じさせない弱毒ウイルスとするために必須と考えられる配列を含む配列であり、ヘルパーコンポーネントプロテアーゼHCPro領域に相当する。本発明の弱毒ウイルス、好ましくは、本発明の弱毒ウイルスであるNDMLM1株は、配列番号7記載のアミノ酸配列で表されるペプチドまたは配列番号7記載のアミノ酸配列の1または数個の塩基が欠失、付加、および/または置換されたアミノ酸配列で表されるペプチドを有する。配列番号7記載のアミノ酸配列で表されるペプチドまたは配列番号7記載のアミノ酸配列の1または数個の塩基が欠失、付加、および/または置換されたアミノ酸配列で表されるペプチドは、配列番号1の塩基配列を含む核酸または配列番号1の塩基配列の1または数個の塩基が欠失、付加、および/または置換された塩基配列でコードされるペプチドである。また、配列番号7記載のアミノ酸配列で表されるペプチドまたは配列番号7記載のアミノ酸配列の1または数個の塩基が欠失、付加、および/または置換されたアミノ酸配列で表されるペプチドは、ヘルパーコンポーネントプロテアーゼHCPro領域に相当するペプチドである。本発明の弱毒ウイルスは、当該配列で表わされるペプチドを有することにより、ユリの葉にモザイク症状を生じさせないか、または軽微なモザイク症状しか生じさせない弱毒ウイルスとして提供でき、斯かる弱毒ウイルスを用いることにより、ユリのモザイク病に対する有効かつ効率的な防除方法を提供する。さらには、本発明の弱毒ウイルスにより、農薬や資材、肥料、種苗費などの経費節減および作物管理労力の節減を図ることができる。また、ウイルス症状が軽微で、球根およびリン片繁殖等の栄養繁殖による増殖を経てもウイルス症状が安定して軽微な、ユリモットルウイルス抵抗性植物を提供することができる。本発明の弱毒ウイルスは、以上のように実用的である。本発明の弱毒ウイルスは、NDMLM1株に特に限定されるものではなく、ユリの葉にモザイク症状を生じさせないか、または軽微なモザイク症状しか生じさせない、という性質を示すウイルスを広く含む。本発明の弱毒ウイルスは、さらに、花に斑入り症状を生じさせないか、または軽微な班入り症状しか生じさせない、という性質を示すことが好ましい。本発明の弱毒ウイルスは、ユリの葉にモザイク症状を生じさせないか、または軽微なモザイク症状しか生じさせないウイルスであれば特に限定されないが、ユリの葉にモザイク症状を生じさせないか、または軽微なモザイク症状しか生じさせず、かつ、花に斑入り症状を生じさせないか、または軽微な班入り症状しか生じさせないウイルスであることが好ましく、また、花に斑入り症状を生じさせないか、または軽微な班入り症状しか生じさせないウイルスであってもよい。2ユリモットルウイルス病の防除方法本発明のユリモットルウイルス病の防除方法は、本発明のユリモットルウイルスの弱毒ウイルスをユリに接種することにより、ユリモットルウイルス病を防除する方法である。弱毒ウイルスを、LMoV感染前に予めユリに接種することにより、LMoVによる感染からユリを防除することができる。ユリモットルウイルス病とは、LMoVに感染を受けたユリが葉のモザイク症状および/または花の斑入り症状を生じている状態をいう。さらにLMovに感染を受けたユリにおいて、草丈の矮化、球根肥大の不良を生じる場合もある。ウイルス接種の対象とするユリは、ユリ属に属するものであれば特に限定されないが、例えば、オリエンタルハイブリッド、アジアティックハイブリッド、およびテッポウユリなどが挙げられる。弱毒ウイルスの接種時期は、特に限定されないが、幼苗期に接種するのが好ましい。弱毒ウイルスのユリへの接種は、例えば、ユリ幼苗草丈約15cmに対して、弱毒ウイルスの感染葉を接種源にして研磨剤としてセライトを塗した綿棒を用いて擦り付ければよい。感染葉は、ユリ幼苗草丈約15cmに対して、弱毒ウイルスを接種した後、栽培を継続して全ての花を開花させ、葉にモザイク症状がないことを確認した株の最上位の花に付いている葉を感染葉とすることができる。葉にモザイク症状がなく、かつ、花に斑入り症状がないことを確認した株の最上位の花に付いている葉を感染葉とすることが好ましい。弱毒ウイルスを接種したユリ幼苗を栽培することにより、弱毒ウイルスを接種したユリ成体を作出することができ、弱毒ウイルスを接種したユリから得られる球根やリン片などを、ユリモットルウイルスに抵抗性を有するユリ植物組織として入手することができる。ユリ植物組織としては、特に限定されないが、例えば、ユリ植物体から得られる葉、茎、根、花、切り花、球根、リン片、細胞塊、カルス、およびプロトプラストなどが挙げられる。3ユリモットルウイルス抵抗性植物の作出方法本発明のユリモットルウイルス抵抗性植物の作出方法は、本発明のユリモットルウイルスの弱毒ウイルスをユリに接種することにより、弱毒ウイルスのウイルスとしての機能が発揮されてユリモットルウイルスに対して抵抗性を示すユリモットルウイルス抵抗性植物を作出する方法である。弱毒ウイルスを、LMoV感染前に予めユリに接種することにより、LMoVによる感染に対して抵抗性を示すユリを作出することができる。ユリの種類、接種方法、接種時期は、上記防除方法と同様でよい。4ユリモットルウイルス抵抗性植物の繁殖方法本発明のユリモットルウイルス抵抗性植物の繁殖方法は、本発明のユリモットルウイルスの弱毒ウイルスに感染したユリを、球根繁殖、リン片繁殖または組織培養によって繁殖させることにより、ユリモットルウイルス抵抗性植物を繁殖させて次世代のユリを作出する方法である。弱毒ウイルスが感染した球根を、圃場または施設内に植付け栽培して、ユリモットルウイルス抵抗性植物を繁殖させることにより、新たに球根およびリン片などの植物組織を得ることができる。ユリモットルウイルス抵抗性植物を繁殖して得られるこれらユリモットル抵抗性植物やユリ植物組織は、既に組織内に移行している弱毒ウイルスにより、強毒ユリモットルウイルスに対する抵抗性を有する。同様に、弱毒ウイルスが感染したユリを、組織培養により増殖した個体についても、強毒ユリモットルウイルスに対する抵抗性を持つ。栄養繁殖によって、弱毒ウイルスの効果を持続することができるので、実際上、生産者が栽培の度に弱毒ウイルスを接種する必要はなく、通常の栽培により球根またはリン片を収穫することによって、弱毒ウイルスの防除効果を何シーズンにもわたって持続的に得ることができる。以下、実施例を挙げて本発明をより具体的に説明するが、本発明の範囲はこれらの実施例のみに限定されるものではない。[弱毒ウイルスNDMLM1株の単離]ウイルスの副作用花の斑入り症状と葉のモザイク症状を意味する。を生じやすいユリのピンク花色品種ソルボンヌの蕾期におけるウイルスの無症状株600株からティッシュブロット分析によってLMoVの弱毒株として1株を選抜し、該株をLMoV1211株とした。LMoV1211株をユリのピンク花色品種ニュートンに接種してウイルス症状を調査した。この時、花弁に表れるウイルス症状を、無症状:0、軽微:1、弱い:2、やや強い:3、強い:4の5段階で評価した。ピンク花色品種ニュートンにおいて、スコアーとして、無症状:0、軽微:1、やや強い:3、強い:4と評価される花弁を図1に示す。評価結果として、第1世代のLMoV1211株のスコアーが1.14であり、無接種のスコアーは0.17であったが、強毒LMoV株であるGLS4株のスコアーは4.00であり、ウイルス症状の程度が最も激しいスコアーであったn数=36。強毒LMoV株として用いたGLS4株以下、強毒GLS4株と記載する場合がある。は、新潟県のリン片繁殖によるユリ球根生産圃場で発生していた強いモザイク症状を示すユリから得られた強毒ウイルスである。LMoV1211株のスコアーは無接種より高く、花の斑入り症状が認められたため、ピンク花色品種におけるLMoV1211株の副作用を低減させるために、花弁に現れるウイルス症状を調査したところ、一番早く開花する下段の花よりも遅く開花する上段の花の方が、ウイルス症状が強くなることを見出した。そこで、該知見に基づいて、上段の花でウイルス症状が見られないLMoV1211株を9世代に渡って選抜したところ、第1世代のLMoV1211株のスコアー1.14を第9世代のLMoV1219株NDMLM1株において0.16n数=25まで低下させることができ、切花としての出荷に問題無いと評価できるものであった。第1世代から第9世代までの、ピンク花色品種ニュートンにおける花弁のウイルス症状の強さスコアーの結果を表1に示す。第9世代として得られた弱毒ウイルスであるLMoV1219株NDMLM1株は、その全長RNA配列に相同的なDNA配列の全長をプラスミドに挿入し、該プラスミドpNDMLM1として独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センターに2011年2月16日に受領され、受領番号FERM-ABP11343が付与されている。また、NDMLM1株は、本出願人によって保存維持されており、日本国特許法施行規則27条の3の規定に準ずる分譲は本出願人が保証する。寄託されたプラスミドに挿入された塩基配列は、配列番号2で示される塩基配列である。[弱毒ウイルスNDMLM1株の特性]NDMLM1株および強毒GLS4株を感染させたユリのアブラムシ伝搬性試験を行った。絶食させたアブラムシを、強毒GLS4株または弱毒ウイルスNDMLM1株を感染させたユリの品種アクティバの葉に移して獲得吸汁させた。その後、吸汁したアブラムシをウイルス感染していないタカサゴユリの葉に移し、タカサゴユリに1日接種吸汁させた5頭/株。強毒GLS4株接種吸汁群およびNDMLM1株接種吸汁群それぞれでタカサゴユリを10株ずつ用いて試験を行った。ティッシュブロット分析抗原抗体反応でのウイルス検出の有無を測定して、アブラムシによる各ウイルスのタカサゴユリへの伝搬率を求めた。その結果、アブラムシとしてワタアブラムシ有翅虫を用いた場合には、強毒GLS4株の伝搬率は80であったのに対してNDMLM1株の伝搬率は0であった。同様にしてジャガイモヒゲナガアブラムシでの伝搬性試験を行った結果、強毒GLS4株の伝搬率は70であったのに対してNDMLM1株の伝搬率は0であった。また、モモアカアブラムシでの伝搬性試験を行った結果、強毒GLS4株の伝搬率は50であったのに対してNDMLM1株の伝搬率は0であった。以上のことから、強毒GLS4株を伝搬する3種類のアブラムシワタアブラムシ、ジャガイモヒゲナガアブラムシ、モモアカアブラムシのいずれによってもNDMLM1株は伝搬されないことが明らかとなった。アブラムシ伝搬性試験の結果を表2に示す[強毒GLS4株感染に対する弱毒ウイルスNDMLM1株の防除効果]対照実験として、無接種群NDMLM1株も強毒GLS4株も接種しない、NDMLM1株群NDMLM1株の接種を行い、強毒GLS4株の接種は行わない、強毒GLS4株群NDMLM1株の接種は行わず、強毒GLS4株の接種を行うについても同様に調査したn数=12。結果を表3に示す。表3の結果から、強毒GLS4株を接種したユリ強毒GLS4群は矮化し、開花期が遅れる傾向にあったのに対し、弱毒NDMLM1感染後、強毒GLS4株を接種したユリNDMLM1群強毒GLS4株群の草丈は、無接種のユリ無接種群と遜色が無く、開花期を早めることが分かった。このことからNDMLM1株はLMoVの強毒株に対して顕著な防除効果があることが明らかとなった。また、NDMLM1株を接種した株の草丈は、無接種株と遜色が無く、1株当りの花数に影響を及ぼさなかったが、開花期を若干早めることが分かった。このことからNDMLM1株を接種すると開花期を早めることが分かり、また弱毒ウイルスを接種することによるユリへの副作用はほとんどないことが明らかになった。したがって、弱毒ウイルスNDMLM1株は、LMoVに対するウイルスワクチンとして用いることができることが明らかとなった。[弱毒ウイルスNDMLM1株の圃場栽培試験]NDMLM1株をユリの品種カサブランカに接種し4農家圃場で無接種区と比較する実用化試験を実施した。1ヶ所の農家圃場Aでは無接種区のユリ29株の内5株にウイルス症状が発生し、その内の3株からLMoV、2株からキュウリモザイクウイルスCMVとLMoVが検出された。同じ圃場でNDMLM1株接種区のユリ27株にはウイルス症状は発生しなかった。結果を表4に示す。表4の結果から、LMoVおよびCMV発生圃場においてNDMLM1株はウイルス感染の防除効果があることを示した。また、該圃場で球根を収穫し、球根1ヶ重を比較したところ、NDMLM1株接種区の球根は無接種区のものより有意に大きかった。このことから球根の肥大についてもLMoVおよびCMV発生圃場においてNDMLM1株は圃場においても防除効果があることが分った。その他の圃場B、C、Dではウイルス症状が発生せず、NDMLM1株接種区の草丈、球根1ヶ重は無接種区と遜色が無く、副作用がほとんどないことが分った。花蕾数は無接種区に比較してNDMLM1株接種区の方が若干増加する傾向にあった。[塩基配列の決定]強毒株GLS4株および弱毒ウイルスNDMLM1株の全塩基配列を決定した。LMoVの全塩基配列を決定するために以下のプライマーを設計し、RTPCR産物を得た。RTPCR産物は精製後、TAクローニング法によりプラスミドベクターへ挿入し、大腸菌を形質転換した。形質転換させた大腸菌DH5αからのプラスミドDNAを精製し、BigDyeTerminatorv31CycleSequencingKitとABIPRISM3100GeneticAnalyzerを使用して塩基配列を決定した。LMoVIC2F:AAAATAAAACAAACCAACAAGACTCAATACAAC配列番号3LMoVIC2R:GTGGCGAGTACAGTGAGAAGC配列番号4弱毒ウイルスNDMLM1株は、配列番号2で示される塩基配列を有していた。配列番号2で示される塩基配列は、5’UTR、P1、Hc-Pro、P3、6K1、CI、6K2、VPg、機能未同定、NIa、NIb、CP、3’UTR、およびPIPOからなる配列である。強毒株GLS4株および弱毒株NDMLM1株のLMoVのヘルパーコンポーネントプロテアーゼHCPro領域をPVXベクターに挿入した感染性キメラクローンを作成し、挿入したHCPro領域により植物における病原性が変化するかを調査した。Baulcombeらが開発した外来遺伝子発現PVXベクターpgR106を使用し、外来遺伝子挿入部位へ強毒株または弱毒株のHCPro遺伝子を挿入したTakkenFLLudererRGabrielsSHWesterinkNLuRdeWitPJandJoostenMHAfunctionalcloningstrategybasedonabinaryPVXexpressionvectortoisolateHRinducingcDNAsofplantpathogensPlantJvol24p275283。PVXベクターpgR106にHCPro遺伝子を挿入するために、表5に記載のFプライマーおよびRプライマーを用いた。FプライマーおよびRプライマーにおける制限酵素部位はNotIである。FプライマーおよびRプライマーは強毒GLS4株および弱毒ウイルスNDMLM1株の両方に共通して用いることができる。これらのプライマーを用いてPCRでHCPro領域を増幅し、得られたPCR産物をNotI処理してPVXベクターpgR106のNotI部位に挿入した。挿入後、HCPro遺伝子の塩基配列が挿入されていることを確認した。HCPro遺伝子を挿入したプラスミドDNA感染性キメラクローンを多量に精製し、パーティクルガン法によって検定植物のNicotianabenthamianaへ接種し、挿入したHCProによりポテトウイルスXの病原性がどのように変化するかを評価した。パーティクルガンはBioRad社製を用い、接種条件はそのマニュアルに従った。強毒株由来のHCProを接種した検定植物においてはPVXの病原性をかなり強くした一方、弱毒株のHCProを接種した検定植物においてはPVXの病原性に影響はなかった図2。HCProを組み込んだPVXベクターを接種した植物からHCProをRTPCRで増幅し、制限酵素SphIで切断して電気泳動し、病原性の強く表れた植物からは、強毒株由来のHCPro、症状の表れなかった植物からは弱毒株由来のHCProが確認された。電気泳動の結果を図3として示す。図3の左からサイズマーカー、弱毒株由来のHCProをSphIで切断したもの、強毒株由来のHCProをSphIで切断したものである。SphI切断パターンは、弱毒株と強毒株で異なっていた。また、植物に接種して症状を示した後もSphI切断パターンは変化しておらずデータ未開示、弱毒株由来のHcPro接種により植物に症状は表れず、強毒株由来のHcPro接種により、病原性が強く表れることが確認できた。弱毒株由来のHcProのSphI切断パターンにおいては、2ヶ所のSphI切断部位を有するため、強毒株由来のSphI切断パターンには観測されない、約430塩基のバンドが出が確認された。