"±-E-1-ベンゾ[d][1,3]ジオキソール-5-イル-4,4-ジメチル-2-1H-1,2,4-トリアゾール-1-イルペンタ-1-エン-3-オール。±-E-1-ベンゾ[d][1,3]ジオキソール-5-イル-4,4-ジメチル-2-1H-1,2,4-トリアゾール-1-イルペンタ-1-エン-3-オールを有効成分とする細胞分化促進剤。細胞が植物細胞である請求項2に記載の細胞分化促進剤。植物の発根促進剤である請求項2又は3に記載の細胞分化促進剤。植物の不定根及び/又は側根形成促進剤である請求項2~4のいずれか一項に記載の細胞分化促進剤。±-E-1-ベンゾ[d][1,3]ジオキソール-5-イル-4,4-ジメチル-2-1H-1,2,4-トリアゾール-1-イルペンタ-1-エン-3-オールを有効成分とするオーキシン活性促進剤。請求項2~5のいずれか一項に記載の細胞分化促進剤または請求項6に記載のオーキシン活性促進剤を含有する、植物の発根用培地。植物を請求項2~5のいずれか一項に記載の細胞分化促進剤または請求項6に記載のオーキシン活性促進剤の存在下栽培し発根させる、クローン苗の生産方法。植物を請求項7に記載の発根用培地にて栽培し、発根させる、クローン苗の生産方法。±-E-1-ベンゾ[d][1,3]ジオキソール-5-イル-4,4-ジメチル-2-1H-1,2,4-トリアゾール-1-イルペンタ-1-エン-3-オールを用いて、細胞の分化を促進する方法。細胞が植物細胞である、請求項10に記載の細胞の分化を促進する方法。細胞の分化が、植物の不定根及び/側根の形成促進である、請求項10または11に記載の細胞の分化を促進する方法。しかし、特許文献1に記載の方法では、パクロプトラゾールにて採穂母樹をあらかじめ処理してから数ヶ月経過しないと挿し穂を得ることが困難であった。そのため、発根能の向上において即効性のあるものが求められていた。一方特許文献2および3の方法は、植物の生長に関するブラシノステロイドの制御を行う方法である。よって、挿し木法のように挿し穂の発根を促進する技術、すなわち根組織の分化のみを促進する技術とは異なる。一般に挿し穂の発根を促進する条件は、植物の生長を促進する条件とは異なる。植物の生長を止める条件により挿し穂の発根が促進される場合も多い。また、特許文献1に記載の方法は、植物に対する発根能が不十分であった。中でも、もともと発根能の低い植物例えばユーカリ属植物などにこの方法を適用した場合には、発根能の改善を見込めなかった。更に、非特許文献1の方法には、側根数を充分に増加させることができないという問題があった。本発明は、細胞分化促進剤の有効成分として有用な新規化合物を提供することを目的とする。該化合物の例としては、植物からの発根を促進して、その発根率を向上させる不定根発根促進剤の有効成分となり得る化合物が挙げられる。また、本発明は、該化合物を含有する細胞分化促進剤を利用した、挿し木法、組織培養法などの方法によるクローン苗の生産性を向上させるための、中でも発根能が低い植物種に属するクローン苗の生産性を向上させるための、発根方法および発根用培地を提供することを目的する。本発明は、以下の1~10を提供する。1±-E-1-ベンゾ[d][1,3]ジオキソール-5-イル-4,4-ジメチル-2-1H-1,2,4-トリアゾール-1-イルペンタ-1-エン-3-オール。2±-E-1-ベンゾ[d][1,3]ジオキソール-5-イル-4,4-ジメチル-2-1H-1,2,4-トリアゾール-1-イルペンタ-1-エン-3-オールを有効成分とする細胞分化促進剤。3細胞が植物細胞である上記2に記載の細胞分化促進剤。4植物の発根促進剤である上記2又は3に記載の細胞分化促進剤。5植物の不定根及び/又は側根形成促進剤である上記2~4のいずれか一項に記載の細胞分化促進剤。6±-E-1-ベンゾ[d][1,3]ジオキソール-5-イル-4,4-ジメチル-2-1H-1,2,4-トリアゾール-1-イルペンタ-1-エン-3-オールを有効成分とするオーキシン活性促進剤。7上記2~5のいずれか一項に記載の細胞分化促進剤または上記6に記載のオーキシン活性促進剤を含有する、植物の発根用培地。8植物を上記2~5のいずれか一項に記載の細胞分化促進剤または上記6に記載のオーキシン活性促進剤の存在下栽培し発根させる、クローン苗の生産方法。9植物を上記7に記載の発根用培地にて栽培し、発根させる、クローン苗の生産方法。10±-E-1-ベンゾ[d][1,3]ジオキソール-5-イル-4,4-ジメチル-2-1H-1,2,4-トリアゾール-1-イルペンタ-1-エン-3-オールを用いて、細胞の分化を促進する方法。11細胞が植物細胞である、上記10に記載の細胞の分化を促進する方法。12細胞の分化が、植物の不定根及び/側根の形成促進である、上記10または11に記載の細胞の分化を促進する方法。本発明によれば、新規なトリアゾール化合物が提供される。該トリアゾール化合物は細胞の分化を促進することができる。例えば、不定根の形成、主根からの側根の形成を促進させ、発根率を向上させることができる。不定根及び側根形成の促進は、例えば、オーキシン類以下、単にオーキシンということもあるの活性の促進によりもたらされる。よって、本発明によれば、クローン苗の生産性を向上させることができる。本発明によれば、発根能が低い植物種のクローン苗の生産性を特に顕著に向上させることができる。従って、本発明は、広く様々な植物種のクローン苗の大量かつ迅速な生産に寄与するものであり、中でも、発根能が低い植物種であっても、クローン苗を大量かつ迅速に生産することを可能とし、その産業的利用に途を開くものである。本発明は、±-E-1-ベンゾ[d][1,3]ジオキソール-5-イル-4,4-ジメチル-2-1H-1,2,4-トリアゾール-1-イルペンタ-1-エン-3-オールとその用途に関する。±-E-1-ベンゾ[d][1,3]ジオキソール-5-イル-4,4-ジメチル-2-1H-1,2,4-トリアゾール-1-イルペンタ-1-エン-3-オールは下記の式1で表される化合物である。±-E-1-ベンゾ[d][1,3]ジオキソール-5-イル-4,4-ジメチル-2-1H-1,2,4-トリアゾール-1-イルペンタ-1-エン-3-オールの由来は特に限定されない。例えば、天然物由来のもの、化学反応により合成されたものを用いることができる。化学反応による合成方法としては、例えば、ピナコリン3,3-dimethylbutan-2-oneをハロゲン化した後に、1,2,4-トリアゾール、及び後述の化合物bと反応させてE-1-benzod1,3dioxol-5-yl-4,4-dimethyl-2-1H-1,2,4-triazol-1-ylpent-1-en-3-one化合物2-4-1を得て、化合物2-4-1を還元して製造することができる。反応条件は実施例に示す条件が例示される。±-E-1-ベンゾ[d][1,3]ジオキソール-5-イル-4,4-ジメチル-2-1H-1,2,4-トリアゾール-1-イルペンタ-1-エン-3-オールは、優れた細胞分化促進作用を有するので、細胞分化促進剤の有効成分として有用である。本発明の細胞分化促進剤は、±-E-1-ベンゾ[d][1,3]ジオキソール-5-イル-4,4-ジメチル-2-1H-1,2,4-トリアゾール-1-イルペンタ-1-エン-3-オールを有効成分とする。本発明の細胞分化促進剤は、±-E-1-ベンゾ[d][1,3]ジオキソール-5-イル-4,4-ジメチル-2-1H-1,2,4-トリアゾール-1-イルペンタ-1-エン-3-オールを有効成分として含むものであればよく、必要に応じて、本発明の目的に反しない限り、他の成分例えば、他の不定根形成促進剤、側根形成促進剤、オーキシンなどの不定根及び側根形成に関する植物ホルモンの活性促進剤をあわせて含むものいわゆる組成物の形態であってもよい。他の成分としては、例えば、国際出願第2011/60293号明細書に記載の細胞分化促進剤が挙げられる。細胞の例としては植物細胞が挙げられる。本発明の細胞分化促進剤は植物細胞の根細胞への分化、主根内部の内鞘組織の側根への分化側根形成を顕著に促進する効果を有する。よって、本発明の細胞分化促進剤は、不定根および/または側根形成促進剤として有用である。本発明の不定根及び/又は側根形成促進剤は、植物を栽培する際に存在させることにより、不定根形成促進効果及び側根形成促進効果を発揮する。植物の種類は特に限定されない。植物は木本植物と草本植物とに分類されうるが、本発明の不定根及び/又は側根形成促進剤はこれらのいずれにも適用可能であり、木本植物に適用されることが好ましく、草本植物よりも発根能が劣っている木本植物に適用されることがより好ましい。木本植物としては、ユーカリ属Eucalyptus植物、シロイヌナズナ属Arabidopsis植物、マツ属Pinus植物、スギ属Cryptomeria植物スギCryptomeriajaponicaなど、サクラ属Prunus植物サクラPrunusspp.、ウメPrunusmume、ユスラウメPrunustomentosaなど、アボカド属Avocado植物、マンゴー属植物マンゴーMangiferaindicaなど、アカシア属Acacia植物、ヤマモモ属Myrica植物、クヌギ属Quercus植物クヌギなどQuercusacutissima、ブドウVitis属植物、リンゴMalus属植物、バラ属Rosa植物、ツバキ属Camellia植物チャCamelliasinensisなど、ジャカランダ属Jacaranda植物ジャカランダJacarandamimosifoliaなど、ワニナシ属Persea植物アボカドPerseaamericanaなど、ナシ属Pyrus植物ナシPyrusserotinaRehder、Pyruspyrifoliaなど、ビャクダン属Santalum植物ビャクダンサンダルウッド;Santalumalbumなどが例示される。このうち、ユーカリ、シロイヌナズナ、マツ、スギ、サクラ、マンゴー、アボカド、アカシア、ヤマモモ、クヌギ、ブドウ、リンゴ、バラ、ツバキ、チャ、ウメ、ユスラウメ、ジャカランタ等に適用した場合に、より本発明の効果を発揮しうる。中でもユーカリ属植物、シロイヌナズナ属植物、マツ属植物、スギ属植物、ツバキ属植物、マンゴー属植物、ワニナシ属植物が好ましく、難発根性として知られるユーカリ、マツ、スギ、チャ、マンゴー、アボカド等、側根が形成されにくいユーカリが好ましい。ユーカリとしては、難発根性で知られるユーカリが好ましく、ユーカリグロビュラス、丸葉ユーカリなどがより好ましく、ユーカリグロビュラスが更に好ましい。また、本発明の不定根及び/又は側根形成促進剤が適用可能な草本植物としては、アブラナ科、ナス科、イネ科、マメ科等に属する植物が挙げられるが、これらの植物に限定されるものではない。このように、本発明においては、ナス科植物等の野菜類と共に、イネ、小麦等の穀物、豆類、トウモロコシなど食糧生産性植物にも一般に適用できるので、将来的な食糧生産技術の上からも大きな期待がもてる。また、アブラナ科、ナス科、イネ科、マメ科等に属する植物のうち、シロイヌナズナArabidopsisthaliana、タバコNicotianatabacum、イネOryzasativa、ミヤコグサLotuscorniculatusvar.japonicusはモデル植物として広く一般に用いられていることから、研究開発の発展に貢献できる面でも大きな期待がもてる。植物としては、植物体の一部または全部であればよい。不定根形成促進を期待する場合には、植物体の一部であることが好ましく、シュートであることがより好ましい。側根形成促進を期待する場合には、植物体全体であることが好ましい。シュートとは、発根能を有する組織全般をいう。該組織としては、枝、茎、頂芽、腋芽、不定芽、葉、子葉、胚軸、不定胚、苗条原基等が例示される。シュートの由来は特に限定されず、温室や屋外に生育している植物個体から得られたものでもよいし、組織培養法により得られた培養組織であってもよいし、天然の植物体の一部の組織であってもよい。シュートは、挿し穂の母本植物や、多芽体から効率良く取得することができる。中でも、挿し穂母本植物から得た挿し穂、母本植物から採取した器官を無菌的に培養することにより得た多芽体、もしくは前記器官を無菌的に育成して得た茎葉であることが好ましい。多芽体は、本発明を適用してクローン苗を生産しようとする植物から、頂芽や腋芽等を切取って、これを組織培養して誘導することができる。多芽体を、母本植物から採取した器官を無菌的に培養して、形成させるには、特開平8-228621号公報に記載の方法、条件に従って行い得る。その方法、条件は概ね次の通りである。まず、材料とする植物から頂芽、腋芽等の組織を採取し、採取した組織について、有効塩素量約0.5~約4の次亜塩素酸ナトリウム水溶液または有効塩素量約5~約15の過酸化水素水溶液に約10分~約20分間浸漬して表面殺菌を行う。次いで、これを滅菌水で洗浄し、固体培地に挿し付けて芽を開じょさせ、伸長してきた茎葉を同じ組成の培地で継代培養することにより、多芽体を形成させる。ユーカリ属やアカシア属の組織例えば腋芽を用いる場合には、固体培地は、ショ糖1~5重量、植物ホルモンとしてベンジルアデニン以下、BAと略す。約0.02mg/l以上約1mg/l以下、ゲランガム約0.2重量以上約0.3重量若しくは寒天約0.5重量以上約1重量以下を含有するムラシゲスクーグ以下、MSと略す。培地またはこのMS培地の硝酸アンモニウム成分と硝酸カリウム成分とを半減させた改変MS培地を用いるのが好ましい。こうして形成された多芽体からは活発にシュートが伸長してくる。多芽体自体は、適当に分割して多芽体形成に用いた培地と同一組成の培地で培養することにより維持し、増殖させることができる。一方、シュートとして挿し穂を用いてもよい。通常は挿し穂に対し、投与されることで、その効果を発揮する。挿し穂としては、植物の少なくとも一部であればよく、緑枝当年枝、熟枝前年以前に伸びた枝等の枝;頂芽や腋芽などの芽;葉、子葉;胚軸などが例示される。木本植物の場合の挿し穂は、通常は緑枝や熟枝であり、草本植物の場合の挿し穂は、通常は葉や芽であるが、これらには限定されない。植物を本発明の不定根及び/又は側根形成促進剤の存在下に栽培する方法は、特に制限はなく、植物の種類、部位、状態などから適宜選択できる。具体的には、不定根及び/又は側根形成促進剤を含む発根用培地で植物を培養する方法;不定根及び/又は側根形成促進剤を含む溶液を植物に接触させる方法、が例示される。植物として、組織培養法により得られた培養組織を用いる場合には前者が好ましく、植物として挿し穂を用いる場合には前者、後者のいずれも好ましい。なお、上記例示した両方法の併用、すなわち、不定根及び/又は側根形成促進剤を含む発根用培地で植物を培養しつつ、不定根及び/又は側根形成促進剤を含む溶液を植物に接触させる方法を採用することも、もちろん可能である。不定根及び/又は側根形成促進剤を含む発根用培地で植物を培養する場合、発根用培地中の不定根及び/又は側根形成促進剤の濃度は、好ましくは約0.01μM以上約100μM以下、さらに好ましくは約0.1μM以上約10μM以下、とりわけ好ましくは約0.5μM以上約5μM以下である。不定根及び/又は側根形成促進剤を含む溶液不定根及び/又は側根形成促進剤溶液を植物に接触させる場合、その接触の方法は特に限定されず、植物の種類、部位、状態、栽培方法などから適宜選択しうる。例えば、植物へ溶液を直接散布する方法、支持体を溶液で浸潤させる方法が挙げられる。不定根及び/又は側根形成促進剤を含む溶液は、不定根及び/又は側根形成促進剤を、適当な溶媒例えば、水などに溶解させて調整され得る。水としては、脱イオン水、蒸留水、逆浸透水、水道水などが例示され、いずれも利用可能である。溶液における不定根及び/又は側根形成促進剤の濃度は、約0.01μM以上約100μM以下であることが好ましく、約0.1μM以上約10μM以下であることがより好ましく、約0.5μM以上約5μM以下であることがさらにより好ましい。不定根及び/又は側根形成促進剤を含む溶液を植物に直接散布する場合は、溶液を、スプレーなどを用いて霧状に、植物の一部または全体に散布すればよい溶液の散布量は、溶液中の不定根及び/又は側根形成促進剤の濃度などにもより、一概には規定できないが、一般には1つの植物あたり約0.5ml以上約5.0ml以下が好ましく、約1.0ml以上約3.0ml以下がより好ましい。散布回数は、1回でも2回以上であってもよいが、少なくとも栽培開始時に散布することが好ましい。さらに栽培条件に応じて、栽培期間中に適宜例えば数日2日~3日おき追加で散布を行ってもよい。支持体を不定根及び/又は側根形成促進剤を含む溶液で湿潤させる場合は、溶液を支持体上部から散水する方法、溶液を満たした容器内に支持体を置床し底面から潅水させる方法などが例示される。支持体上部から散水する場合、上部からの散水量としては、1つの植物あたり約1.0ml以上約10ml以下が好ましく、約3.0ml以上約5.0ml以下がより好ましい。底面から潅水させる場合は、溶液が支持体に、実質的に均一に湿潤されればよい。支持体を溶液で湿潤させる場合、溶液のほかに別途発根用培地を用意し、両者で支持体を湿潤させてもよく、このことは前述したとおりである。本発明において発根用培地とは、植物から発根させるために用いられる培地を意味する。発根用培地は、銀イオンおよび/または抗酸化剤を含有することが好ましく、銀イオンおよび抗酸化剤の両方を含有することがより好ましい。銀イオンは、チオ硫酸銀STS、AgS4O6や硝酸銀等の銀化合物銀イオン源として培地中に添加すればよい。中でもSTSは、培地に添加して植物体例えばシュートを培養すると、健全な根の発根伸長が促進されるので、本発明で用いる銀イオン源として好ましい。これは、このSTSに由来する銀イオンが、培地中で、チオ硫酸銀イオンの形態を取り、マイナスに帯電しているためと考えられる。発根用培地中に添加する銀イオンの濃度は、銀イオン源の種類その他の培養条件などにもよるが、銀イオン源の濃度として約0.5μM以上約6μM以下が好ましく、約2μM以上約6μM以下がより好ましい。一方、抗酸化剤としては、例えば、アスコルビン酸や亜硫酸塩等、公知のものを用いることができる。中でもアスコルビン酸は、培地への残留性が低いので、本発明で用いる抗酸化剤として好ましい。発根用培地中に添加する抗酸化剤の濃度は、約5mg/l以上約200mg/l以下が好ましく、約20mg/l以上約100mg/l以下がより好ましい。本発明で用いる発根用培地は、上記成分に加え、無機成分、炭素源、ビタミン類、アミノ酸類および植物ホルモン類等を含み得る。無機成分としては、窒素、リン、カリウム、硫黄、カルシウム、マグネシウム、鉄、マンガン、亜鉛、ホウ素、モリブデン、塩素、ヨウ素、コバルト等の元素や、これらを含む無機塩が例示される。該無機塩としては例えば、硝酸カリウム、硝酸アンモニウム、塩化アンモニウム、硝酸ナトリウム、リン酸1水素カリウム、リン酸2水素ナトリウム、塩化カリウム、硫酸マグネシウム、硫酸第1鉄、硫酸第2鉄、硫酸マンガン、硫酸亜鉛、硫酸銅、硫酸ナトリウム、塩化カルシウム、塩化マグネシウム、ホウ酸、三酸化モリブデン、モリブデン酸ナトリウム、ヨウ化カリウム、塩化コバルト等やこれらの水和物が挙げられる。無機成分として、上具体例の中から1種を選択して、或いは2種以上を組み合わせて用いうる。本発明で用いられる発根用培地においては、窒素、リン、カリウムが必須元素として含まれることが好ましい。よって、これら無機成分の具体例のうち、窒素、リン、カリウム、窒素を含む無機塩、リンを含む無機塩、およびカリウムを含む無機塩が好ましく、窒素、リン、カリウム、窒素を含む無機塩がより好ましい。無機成分は、発根用培地中の濃度が、1種の場合は約0.1μM以上約100mM以下となるように添加することが好ましく、約1μM以上約100mM以下となるように添加することがより好ましい。2種以上の組み合わせの場合はそれぞれ約0.1μM以上約100mM以下となるよう添加することが好ましく、約1μM以上約100mM以下となるように添加することがより好ましい。炭素源としては、ショ糖等の炭水化物とその誘導体;脂肪酸等の有機酸;エタノール等の1級アルコール、などの化合物を使用することができる。炭素源として、上記具体例の中から1種を選択して、或いは2種以上を組み合わせて用いうる。炭素源は、発根用培地中に約1g/l以上約100g/l以下となるよう添加することが好ましく、約10g/l以上約100g/l以下となるように添加することがより好ましい。しかし、培養を炭酸ガスを供給しながら行う場合には、培地は炭素源を含む必要は無く、含まないことが好ましい。ショ糖等の炭素源となりうる有機化合物は微生物の炭素源ともなるので、これらを添加した培地を用いる場合には、無菌環境下で培養を行う必要があるが、炭素源を含まない培地を用いることにより、非無菌環境下での培養が可能となる。ビタミン類としては、例えば、ビオチン、チアミンビタミンB1、ピリドキシンビタミンB4、ピリドキサール、ピリドキサミン、パントテン酸カルシウム、イノシトール、ニコチン酸、ニコチン酸アミドおよび/またはリボフラビンビタミンB2等を使用することができる。ビタミン類として、上記具体例の中から1種を選択して、或いは2種以上を組み合わせて用いうる。ビタミン類は、発根用培地中の濃度が、1種の場合は発根用培地中に約0.01mg/l以上約200mg/l以下となるように添加することが好ましく、約0.02mg/l以上約100mg/l以下となるように添加することがより好ましい。2種以上の組み合わせの場合はそれぞれ、発根用培地中に約0.01mg/l以上約150mg/l以下となるよう添加することが好ましく、約0.02mg/l以上約100mg/l以下となるように添加することがより好ましい。アミノ酸類としては、例えば、グリシン、アラニン、グルタミン酸、システイン、フェニルアラニンおよび/またはリジン等を使用することができる。アミノ酸類として、上記具体例の中から1種を選択して、或いは2種以上を組み合わせて用いうる。アミノ酸類は、発根用培地中の濃度が、1種の場合は発根用培地中に約0.1mg/l以上約1000mg/l以下となるように添加することが好ましく、2種以上の組み合わせの場合は、それぞれ発根用培地中に約0.2mg/l以上約1000mg/l以下となるよう添加することが好ましい。また、植物ホルモン類としては、例えば、オーキシン類および/またはサイトカイニン類を使用することができる。オーキシン類としては、ナフタレン酢酸NAA、インドール酢酸IAA、p-クロロフェノキシ酢酸、2,4-ジクロロフェノキシ酢酸2,4D、インドール酪酸IBAおよびこれらの誘導体等が例示され、これらから選択される1種以上または2種以上を組み合わせて用い得る。また、サイトカイニン類としてはベンジルアデニンBA、カイネチン、ゼアチンおよびこれらの誘導体等が例示され、これらから選択される1種以上または2種以上を組み合わせて用い得る。植物ホルモン類としては、オーキシン類のみ、サイトカイニン類のみ、或いはオーキシン類とサイトカイニン類の両方を組み合わせて用いうる。植物ホルモン類は、1種を用いる場合には発根用培地中に約0.01mg/l以上約10mg/l以下となるように添加することが好ましく、約0.02mg/l以上約10mg/l以下となるように添加することがより好ましい。2種以上の場合にはそれぞれ、発根用培地中に約0.01mg/l以上約10mg/l以下となるよう添加することが好ましく、約0.02mg/l以上約10mg/l以下となるように添加することがより好ましい。なお、本発明においては、植物組織培養用培地として公知の培地に、必要に応じて不定根及び/又は側根形成促進剤を添加するほか、さらに銀イオンおよび/または抗酸化剤を添加し、さらにまた、炭素源、植物ホルモン類を適宜添加等して、発根用培地として用いてもよい。かかる植物組織培養用培地としては、例えば、MS培地、リンスマイヤースクーグ培地、ホワイト培地、ガンボーグのB-5培地、ニッチニッチ培地等を挙げることができる。中でも、MS培地およびガンボーグのB-5培地が好ましい。これらの培地は、必要に応じて適宜希釈等して用いることができる。上記発根用培地は、液体培地、固体培地のいずれであってもよいが、液体培地の方が作業効率および移植時に根を傷つけることが少ない点で好ましい。液体培地の場合には培地組成を混合し調製してそのまま用い得る。また固体培地の場合には液体培地と同様に培地組成を混合し調製すると同時に、或いは調整後に、寒天またはゲランガム等の固化剤で固化させて使用しうる。固化剤の培地への添加量は、固化剤の種類や培地の組成によっても異なる。固化剤が寒天の場合0.5重量以上1重量以下であることが好ましい。固化剤がゲランガムの場合0.2重量以上0.3重量以下であることが好ましい。発根用培地への植物の挿し付け方法は、培地の種類、培養条件等により適宜選択しうる。例えば植物がシュートの場合を挙げて説明すると次の通りである。発根用培地が固体培地の場合は、発根用培地に直接シュートの基部を挿し付けて培養すればよい。一方発根用培地が液体培地の場合は、例えば、後述の支持体を発根用培地で湿潤させたものにシュートの基部を挿し付けて培養すればよい。なお、発根用培地に挿し付ける時にシュートの基部に傷をつけるといった物理的刺激を加えることも、発根率の向上のために好ましい。シュートの基部とは、シュートの一端であって根が形成される領域葉の形成される端部に対し反対側を意味する。シュートとして多芽体を用いる場合の基部は、多芽体を分割する際の切断面を有する領域である。シュートの基部への傷のサイズ大きさ、形状などは特に限定されない。例えば、シュートとして多芽体を用いる場合、シュートの基部上述の切断面を正面方向から見た際に十字型となるような傷を付けることが好ましい。傷を付ける際には、ハサミやナイフなどを用いることができる。本発明において支持体とは、植物を支持するための支持体である。発根用培地特に固体培地を用いる場合などには、支持体は不要の場合があるが、それ以外の場合には通常支持体が利用される。支持体は、栽培の期間中植物を指しつけた状態で保持できるものが好ましい。また、栽培にあたり液状の発根用培地を用いる場合には、通常、支持体に浸潤させて用いられる。よって支持体は液体で浸潤され得るものが好ましく、中でも、不定根及び/又は側根形成促進剤を含む溶液、或いは不定根及び/又は側根形成促進剤を含む液体培地により実質的に均一に湿潤され得るものが好ましい。発根用培地として、液体培地を用いる場合には、液体培地不定根及び/又は側根形成促進剤を含まないと不定根及び/又は側根形成促進剤を含む溶液とを別個に支持体に添加してもよいし、予め調製した不定根及び/又は側根形成促進剤を含む液体培地を支持体に添加してもよい。支持体としては、従来慣用の支持体を用いることができ、特に限定されない。支持体としては例えば、砂、赤玉土等の自然土壌;籾殻燻炭、ココナッツ繊維、バーミキュライト、パーライト、ピートモス、ガラスビーズ等の人工土壌;発泡フェノール樹脂、ロックウール等の多孔性成形品などを挙げることができる。かかる支持体を培養容器内に入れ、不定根及び/又は側根形成促進剤を含む溶液、或いは不定根及び/又は側根形成促進剤を含む液体培地にて湿潤させることにより発根床が調製され得る。なお、発根用培地が固体培地の場合には、固体培地を直接培養容器に入れることで、発根床が調製され得る。本発明においては、発根用培地または支持体を納めるための培養容器を用い得る。培養容器としては、従来慣用の培養容器を用いることができ、特に限定されない。例えば、育苗ポット、プラグトレーなどが例示される。培養容器は密閉型でもよいし開放型でもよいが、密閉型のものが好ましい。密閉型の培養容器を用いることにより、散布された不定根及び/又は側根形成促進剤を含む溶液を保持することができる。また、植物、例えばシュートやこれから形成されるクローン苗を取り巻く環境の湿度維持が容易となる。シュートとして枝を用いる場合には、培養容器として密閉型の培養容器を用いることが好ましい。これによりシュートを高湿度下に置くことが容易となるので枝についた葉の蒸散作用が抑制され、従来行われていた葉の一部切除処理を省略することができる。培養容器は、容器内への炭酸ガス供給が可能な容器であることがより好ましい。このような培養容器としては、二酸化炭素透過性の膜で蔽われた開口部を有する容器が例示される。このような容器を用いることにより、培養環境の湿度をも容易に調整しうる。開口部の形状は特に問わない。二酸化炭素透過性の膜の材料は特に限定されず、ポリテトラフルオロエチレンなどが例示される。また、膜の孔径も特に限定されず、約0.1μm以上約1μm以下のものなどが例示される。植物を栽培する際の栽培条件としては、植物から発根させ得る条件である限り特に限定されない。栽培条件は、植物の種類、部位、状態、発根用培地の種類などにより一概に規定することは難しいが、例えば、温度は、約23°C以上約28°C以下であることがより好ましい。光強度は、光合成有効光量子束密度として表され、約10μmol/m2/s以上約1000μmol/m2/s以下であることが好ましく、約50μmol/m2/s以上約500μmol/m2/s以下であることがより好ましい。いずれの場合でも、例えばシュートの場合には、通常は約2週間以上約5週間以内で、シュートからの発根が観察されるようになる。栽培は、約650nm以上約670nm以下の波長成分と約450nm以上約470nm以下の波長成分とを9:1~7:3の割合で含む光の照射下で行うことが好ましく、これらの波長成分を9:1~8:2の割合で含む光の照射下で行うことがより好ましい。かかる波長成分を含む光を照射して栽培を行うことで、植物からの発根がより促進され得る。さらに、炭酸ガスを栽培環境中に、通常は300ppm以上2000ppm以下、好ましくは800ppm以上1500ppm以下となるように供給することが好ましい。炭酸ガスの供給量の制御は、人工気象器等の設備や、二酸化炭素透過性の膜を開口部に有する培養容器などを利用して行われうる。湿度は植物の種類等栽培条件に応じて調整することができる。通常は、50以上、好ましくは60以上である。また、ユーカリ属植物の場合、80以上であることが好ましく、85以上であることがより好ましい。この湿度であることにより、植物からの発根を促進することができる。また上限については特に制限はない。一方、シュートとして挿し穂を用いる場合には、遮光を行うことが好ましい。遮光率は、30以上70以下が好ましく、40以上60以下がより好ましい。以上のようにして、本発明の不定根及び/又は側根形成促進剤を用いて、植物から不定根を発根させることができる。不定根が発根した状態のものは、通常、クローン苗と呼ばれる。本発明の不定根及び/又は側根形成促進剤を用いて一定期間栽培植物の種類、部位、状態などにもよるが、例えばユーカリの場合には10日以上90日以下程度を続け、根を充実させてから、これを育苗容器、苗畑等に移植して育成し、植林等の所定の目的に使用可能な苗とすることができる。この間の用土や、苗を育成する際の温度光強度等の条件は、その植物に適するように適宜設定すればよい。なお、不定芽や苗条原基等、培養組織由来のシュートを発根させた場合には、通常、育苗容器等への移植の前に、順化の過程を経る必要がある。本発明の細胞分化促進剤は、以上説明したように不定根及び/又は側根形成促進剤として有用である。本発明における不定根形成促進作用および側根形成促進作用は、オーキシンの活性と類似しているので、±-E-1-ベンゾ[d][1,3]ジオキソール-5-イル-4,4-ジメチル-2-1H-1,2,4-トリアゾール-1-イルペンタ-1-エン-3-オールは、オーキシン活性促進剤の有効成分としても有用である。さらに、オーキシン活性促進剤は、オーキシン合成促進剤、オーキシン代謝分解阻害剤とも言い換え得る。オーキシン活性促進剤の対象はオーキシン類である。オーキシン類の例は上述のとおりである。[作用]本発明では、植物を不定根及び/又は側根形成促進剤の存在下栽培することにより、前記植物から発根させることができる。その理由は、以下のように推察される。±-E-1-ベンゾ[d][1,3]ジオキソール-5-イル-4,4-ジメチル-2-1H-1,2,4-トリアゾール-1-イルペンタ-1-エン-3-オールの不定根形成促進効果および側根形成促進効果は、植物の組織におけるオーキシン類の活性の促進もしくは合成の促進、またはオーキシン類の代謝分解阻害など、何らかの形でオーキシン類の働きに関わると考えられる。以下、実施例により本発明をさらに詳細に説明する。以下の合成経路にて、実施例及び比較例で用いる化合物3-4-1及び化合物MA65を合成した下記の製造例。反応A:Br2,AlCl3,diethylether反応B:1,2,4-triazole,K2CO3,acetone反応C:R-C6H5CHO,TFAorCH3COOH,toluene,refluxRは、4-ジメチルアミノフェニル基、またはベンゾ[d][1,3]ジオキソール-5-イル基を表す。反応D:NaBH4,MeOH,onice製造例13,3-dimethyl-1-1H-1,2,4-triazol-1-ylbutan-2-one化合物aの合成合成経路の反応A及びBピナコリン3,3-dimethylbutan-2-one25gをジエチルエーテル70mLに溶解し、塩化アルミニウムを触媒量加えた。氷浴下で撹拌しながら臭素25gを徐々に加えた後、30分間撹拌した。水を加え反応を停止後、酢酸エチルで3回抽出し、無水硫酸ナトリウムで脱水後、エバポレーターで減圧濃縮し、粗1-bromo-3,3-dimethylbutan-2-one混合物を得た。得られた1-bromo-3,3-dimethylbutan-2-one混合物をアセトン150mLに溶解し、炭酸カリウム35g、1,2,4-トリアゾール22gを加え、室温で2時間撹拌した。水を加え反応を停止後、酢酸エチルで3回抽出し、無水硫酸ナトリウムで脱水後、エバポレーターで減圧濃縮した。再結晶を行い、3,3-dimethyl-1-1H-1,2,4-triazol-1-ylbutan-2-one化合物aの白色結晶を得た。製造例21-4-dimethylaminophenyl-4,4-dimethyl-2-1H-1,2,4-triazol-1-ylpent-1-en-3-one化合物群2-1の合成合成経路の反応C3,3-dimethyl-1-1H-1,2,4-triazol-1-ylbutan-2-one化合物a0.83g、4-ジメチルアミノベンズアルデヒド0.82gをトルエン40mLに溶解し、撹拌した。モルホリン0.48g、トリフルオロ酢酸0.27gを滴下した後、ソックスレー抽出器の抽出部にモレキュラーシーブ4Aを詰めて4時間加熱還流し、脱水した。反応液を室温で冷却し水を加えて反応停止後、酢酸エチルで有機相を3回抽出し、無水硫酸ナトリウムで脱水後、エバポレーターで減圧濃縮した。粗生成物をシリカゲルカラムクロマトグラフィー酢酸エチル:ヘキサン=3:1で精製し、幾何異性体を分離後、再結晶により化合物群2-1の各々の黄色結晶を得た収率;22.8。化合物群2-1は以下の化合物により構成される。化合物2-1-1:E-1-4-dimethylaminophenyl-4,4-dimethyl-2-1H-1,2,4-triazol-1-ylpent-1-en-3-one2-1-11H-NMRCDCl3,TMS,ppmδ;1.073s,9H,3.000s,6H,6.643d,2H,J=8.5Hz,6.986s,1H,C=CH,7.208d,2H,J=8.5Hz,8.031s,1H,8.241s,1H化合物2-1-2:Z-1-4-dimethylaminophenyl-4,4-dimethyl-2-1H-1,2,4-triazol-1-ylpent-1-en-3-one2-1-21H-NMRCDCl3,TMS,ppmδ;1.241s,9H,2.900s,6H,6.493d,2H,J=9.0Hz,6.550d,2H,J=9.0Hz,7.742s,1H,C=CH,8.057s,1H,8.221s,1H製造例3±-Z-1-4-dimethylaminophenyl-4,4-dimethyl-2-1H-1,2,4-triazol-1-ylpent-1-en-3-ol化合物3-1-2の合成合成経路の反応D化合物2-1-10.13gをメタノール10mLに溶解し、氷浴で撹拌した。水素化ホウ素ナトリウム16.5mgを徐々に加えて2時間撹拌した。水を加えた後酢酸エチルで3回抽出し、無水硫酸ナトリウムで脱水後、エバポレーターで減圧濃縮した。粗生成物をシリカゲルカラムクロマトグラフィー酢酸エチル:ヘキサン=2:1で精製し、±-E-1-4-dimethylaminophenyl-4,4-dimethyl-2-1H-1,2,4-triazol-1-ylpent-1-en-3-ol化合物3-1-1の白色結晶0.11gを得た収率;85。化合物3-1-2MA65±-Z-1-4-dimethylaminophenyl-4,4-dimethyl-2-1H-1,2,4-triazol-1-ylpent-1-en-3-ol1H-NMRCDCl3,TMS,ppmδ;0.803s,9H,2.918s,6H,3.624d,1H,J=6.5Hz,OH,4.207d,1H,J=9.0Hz,CHOH,6.498d,2H,J=9.5Hz,6.607s,1H,C=CH,6.608d,2H,J=9.5Hz,8.002s,1H,8.098s,1H製造例41-benzo[d][1,3]dioxol-5-yl-4,4-dimethyl-2-1H-1,2,4-triazol-1-ylpent-1-en-3-one2-4-1化合物群2-4の合成合成経路の反応C製造例2において4-ジメチルアミノベンズアルデヒドの代わりに式2で表される化合物bを用いたほかは同様にして、化合物群2-4を合成した。化合物群2-4は以下の化合物により構成される。化合物2-4-1:E-1-benzod1,3dioxol-5-yl-4,4-dimethyl-2-1H-1,2,4-triazol-1-ylpent-1-en-3-one2-4-11H-NMRCDCl3,TMS,ppmδ;1.045s,9H,6.004s,2H,6.815m,3H,7.055s,1H,C=CH,8.047s,1H,8.241s,1H化合物2-4-2:Z-1-benzo[d][1,3]dioxol-5-yl-4,4-dimethyl-2-1H-1,2,4-triazol-1-ylpent-1-en-3-one2-4-21H-NMRCDCl3,TMS,ppmδ;1.219s,9H,5.925d,1H,J=2.0Hz,5.959s,2H,6.582dd,1H,J1=8.5Hz,J2=2.0Hz,6.736s,1H,8.5Hz,7.606s,1H,C=CH,8.036s,1H,8.210s,1H製造例5±-E-1-benzo[d][1,3]dioxol-5-yl-4,4-dimethyl-2-1H-1,2,4-triazol-1-ylpent-1-en-3-ol化合物3-4-1の合成合成経路の反応D化合物2-1-1の代わりに化合物2-4-1を用いたほかは製造例3と同様にして、化合物3-4-1を合成した。化合物3-4-1:±-E-1-benzo[d][1,3]dioxol-5-yl-4,4-dimethyl-2-1H-1,2,4-triazol-1-ylpent-1-en-3-ol1H-NMRCDCl3,TMS,ppmδ;0.678s,9H,4.272d,1H,J=9.0Hz,OH,4.629d,1H,J=9.0Hz,CHOH,6.015s,2H,6.848m,3H,7.265s,1H,C=CH,8.037s,1H,8.441s,1H実施例1、比較例1及び比較例2シロイヌナズナにおける発根試験角シャーレ滅菌2号、栄研化学に、オートクレーブした1/2MS培地を入れて固化させ、以下の要領で滅菌したシロイヌナズナ種子を植えた。サージカルテープをシャーレに巻き、暗所、4°Cで2日間低温処理を行った。その後、22°C、連続光下にてバイオトロンにシャーレを立てかけて置き、4日間生育させた。その中から生育のよい個体を選抜した。dimethylsulfoxideDMSOに化合物3-4-1実施例1、化合物MA65比較例1をそれぞれ1μM溶かした各種化合物を処理した1/2MS培地に植えかえた。これを同様にバイオトロンで6日間生育させ、生育後の単位主根長当たりの側根数平均値を算出したn=7。単位主根長当たりの側根数とは、主根1cmあたりの側根の数であり、個体の側根の数をその主根の長さで割ったものを指す。また、化合物を添加しなかったほかは同様にして結果を得た比較例2。結果を表1に示す。シロイヌナズナ種子の滅菌シロイヌナズナ種子を70エタノールで30分間滅菌した後、エタノールに1分間浸漬し、滅菌濾紙上で風乾した。1/2MS培地1LMurashigeSkoogSaltMixtureGibcoBRL2.2gSucrose10.0g1000×ビタミンストック1.0mL以上の組成で調整した培地のpHを、1NNaOHで5.7に調整した後、蒸留水で1.0Lにメスアップし、植物用寒天0.8を加え、オートクレーブした。1000×ビタミンストックニコチン酸50mgピリドキシン塩酸塩50mgチアミン塩酸塩20mgグリシン200mgビオチン5mg葉酸50mg約80mLの蒸留水で懸濁し、1NNaOHを溶解するまで加え、蒸留水で100mLにメスアップした。実施例1化合物3-4-1は、比較例2無添加よりも単位主根長あたりの側根数が多く、主根は短かった表1。実施例1の単位主根長あたりの側根数は、比較例1化合物MA65よりも多く、主根の長さは短かった表1。この結果は、本発明の細胞分化促進剤が、側根の発根を促進しかつ側根数の増加を促進することを示すものである。実施例2、比較例3及び比較例4ユーカリにおける発根試験挿し穂の材料として、ユーカリプタスグロビュラスEucalyptusglobulus、以下、単にE.グロビュラスと略記する。の難発根系統であるユーカリクローンAG-004を用いた。すなわち採穂母樹から、5~20cmの長さ、節が1~3節、葉が2~6葉程度に伸長した穂木を切り出し、挿し穂を調製した。得られた挿し穂の基部を、化合物3-4-1実施例2、化合物MA65比較例3をそれぞれ1μM、銀イオン源としてSTSAgS4O65μM、抗酸化剤としてアスコルビン酸50mg/l、および植物ホルモンとしてIBA2mg/lを添加した、4倍希釈MS培地組成:硝酸アンモニウム412.5mg/l、硝酸カリウム475mg/l、リン酸2水素カリウム42.52mg/l、ヨウ化カリウム0.21mg/l、なお、本培地に炭素源は添加されていない。にて湿潤した発泡フェノール樹脂製多孔性支持体スミザーズオアシス社製、商品名:オアシスに挿し付け、炭酸ガス濃度1000ppm、温度25°C、650~670nmの波長成分と450~470nmの波長成分とを8.2:1.8の割合で含む、光合成有効光量子束密度51.3μmol/m2/Sの赤色光照射下で2ヶ月間培養を行った。なお、このとき培養容器としては、最大寸法が縦10~11.5cm×横10~11.5cm×高さ10.0cm程度の、胴部がやや張出した形状の立方体のものを用いた。この培養容器の頂面には、孔径0.45μmのポリテトラフルオロエチレン製膜ミリポア社製、商品名:ミリシールを貼り付けた円形開口部1個が設けられている。培養容器内の炭酸ガスの濃度は、培養容器外の炭酸ガスが培養容器の開口部の炭酸ガス透過性の膜より透過するため、培養容器の開口部の膜より透過した濃度約1000ppmであった。赤色光照射の培養容器への照射は、光照射装置として商品名:CCFL光源ユニット、メーカー名:日本医化器械製作所を用いて行った。また、培養容器をパラフィルムで封鎖する事により培養容器内の湿度を85以上となるように調整した。挿し穂は、この培養容器1個当たり16本を挿し付けた。挿し穂の供試数それぞれ50本と、2ヶ月間培養後に発根したシュートの数発根数から、発根率を算出した。また、化合物を添加しなかったほかは同様にして結果を得た比較例3。結果を表2に示す。化合物3-4-1を用いた場合には、比較例4無添加よりもユーカリの発根率が顕著に高まり、比較例3化合物MA65よりも高い発根率を示した表2。更に、実施例2では比較例3よりも根数が多く、根が短かった図1。この結果は、本発明の細胞分化促進剤が、不定根の発根を促進しかつ不定根の発根数を増加させることを示している。また、実施例1および実施例2の結果から、本発明の細胞分化促進剤は、オーキシンの活性を促進しているものと推測される。"