"9HODEもしくは13HODEを特異的に認識し、9HODE、13HODEを実質的に認識しない抗体。9HODEを特異的に認識し、9HODE、13HODE、13HODEを実質的に認識しない請求項1に記載の抗体。13HODEを特異的に認識し、13HODE、9HODE、9HODEを実質的に認識しない請求項1に記載の抗体。モノクローナル抗体である請求項1~3のいずれかに記載の抗体。ハイブリドーマ細胞株Hybridomaclone4A91、Hybridomaclone12131またはHybridomaclone12135によって産生されたモノクローナル抗体である請求項1~4のいずれかに記載の抗体。請求項1~5のいずれかに記載の抗体を含む、酸化ストレスに起因する疾患もしくは酸化ストレスの程度を診断するための診断剤。請求項4に記載のモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマ。酸化ストレスに起因する疾患を診断する方法であって、aヒト由来のサンプルに請求項1~5のいずれかに記載の抗体を接触させる工程、b前記抗体に結合された9HODEおよび/または13HODEを検出もしくは定量する工程を含み、bにおいて定量された、閾値レベルを上回る前記試料中の9HODEおよび/または13HODEの量が酸化ストレスに起因する疾患の存在を示唆し、閾値レベルを下回る前記試料中の9HODEおよび/または13HODEの量が酸化ストレスに起因する疾患の不存在を示唆する、方法。請求項1~5のいずれかに記載の抗体を含む、9HODEもしくは13HODEを特異的に検出若しくは定量するための免疫測定キット:酸化ストレスに起因する疾患もしくは酸化ストレスの程度を診断するための請求項9に記載の免疫測定キット:第1抗体として請求項1~5のいずれかに記載の抗体を、第2抗体として第1抗体に対する標識された抗体を有する、請求項9又は10に記載のキット。さらに9HODEもしくは13HODEと血清アルブミンBSAもしくはHSAもしくはオボアルブミンOVAの複合体を有する請求項9~11のいずれかに記載のキット第1抗体として請求項1~5のいずれかに記載の抗体を、第2抗体として第1抗体に対する標識された抗体を用いる間接競合阻害法ELISA法による9HODEおよび/または13HODEの免疫学的検出方法。血清アルブミンで標識された9HODEおよび/または血清アルブミンで標識された13HODEをプレートに固相化する工程を含む、請求項13に記載の免疫学的検出方法。本発明は、9HODEもしくは13HODEを簡便かつ正確に測定する技術を提供することを目的とする。本発明者は、9HODEおよび/または13HODEを特異的に認識し、9HODE、13HODEを実質的に認識しない抗体が得られることを見出し、本発明を完成した。本発明は、以下のHODEに対する特異的抗体、酸化ストレスに起因する疾患の診断方法、キット、ハイブリドーマおよび免疫学的検出方法を提供するものである。項1.9HODEもしくは13HODEを特異的に認識し、9HODE、13HODEを実質的に認識しない抗体。項2.9HODEを特異的に認識し、9HODE、13HODE、13HODEを実質的に認識しない項1に記載の抗体。項3.13HODEを特異的に認識し、13HODE、9HODE、9HODEを実質的に認識しない項1に記載の抗体。項4.モノクローナル抗体である項1~3のいずれかに記載の抗体。項5.ハイブリドーマ細胞株Hybridomaclone4A91、Hybridomaclone12131またはHybridomaclone12135によって産生されたモノクローナル抗体である項1~4のいずれかに記載の抗体。項6.項1~5のいずれかに記載の抗体を含む、酸化ストレスに起因する疾患もしくは酸化ストレスの程度を診断するための診断剤。項7.項4に記載のモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマ。項8.酸化ストレスに起因する疾患を診断する方法であって、aヒト由来のサンプルに項1~5のいずれかに記載の抗体を接触させる工程、b前記抗体に結合された9HODEおよび/または13HODEを検出もしくは定量する工程を含み、bにおいて定量された、閾値レベルを上回る前記試料中の9HODEおよび/または13HODEの量が酸化ストレスに起因する疾患の存在を示唆し、閾値レベルを下回る前記試料中の9HODEおよび/または13HODEの量が酸化ストレスに起因する疾患の不存在を示唆する、方法。項9.項1~5のいずれかに記載の抗体を含む、9HODEもしくは13HODEを特異的に検出若しくは定量するための免疫測定キット:項10.酸化ストレスに起因する疾患もしくは酸化ストレスの程度を診断するための項9に記載の免疫測定キット:項11.第1抗体として項1~5のいずれかに記載の抗体を、第2抗体として第1抗体に対する標識された抗体を有する、項9又は10に記載のキット。項12.さらに9HODEもしくは13HODEと血清アルブミンBSAもしくはHSAもしくはオボアルブミンOVAの複合体を有する項9~11のいずれかに記載のキット項13.第1抗体として項1~5のいずれかに記載の抗体を、第2抗体として第1抗体に対する標識された抗体を用いる間接競合阻害法ELISA法による9HODEおよび/または13HODEの免疫学的検出方法。項14.血清アルブミンで標識された9HODEおよび/または血清アルブミンで標識された13HODEをプレートに固相化する工程を含む、項13に記載の免疫学的検出方法。本発明によれば、9HODEもしくは13HODEを簡便、迅速かつ正確に定量することが可能であり、酸化ストレスの程度を容易に評価することができ、酸化ストレスに起因する疾患の診断を容易に行えるようになった。例えば、アルツハイマー病、血管性痴呆と総HODEが関係していることが知られているが、本発明により9HODE、13HODEを正確に定量できるようになったため、より正確な診断が可能になると期待される。本発明において抗体とは、ポリクローナル抗体、モノクローナル抗体、モノクローナル抗体のフラグメント、Fab’2化抗体、Fab’化抗体、短鎖抗体scFv、ダイアボディ、およびミニボディを包含する。本発明において、サンプルは、ヒト由来の、血液血漿、血清、血球赤血球、白血球を含む、尿、脳脊髄液、涙液、精液、唾液、リンパ液、組織の一部生検等により得られるなどが挙げられ、好ましくは血液血漿、血清、血球を含む、尿、特に血漿または血清が例示される。HODEは、水酸基を有するオクタデカジエノイックアシッドoctadecadienoicacidを包含する。該HODEの水酸基の結合する炭素の部位および2つの二重結合による幾何異性体体、体もしくは体により4種類の異性体が存在する。これらの異性体のうち体が非特異的なラジカル酸化を受け生成されるという点で重要であり、本発明の抗体は、体を特異的に認識し、他の異性体を実質的に認識しないことを特徴としている。図1に示すように、還元型CoQ10、酸化型COQ10などは年齢とともに低下するが、HODE、或いはHODE比は年齢と相関があり、HODEは年齢とともに蓄積され、過去に受けた酸化ストレスの程度を評価することができ、酸化ストレスに起因する疾患に対するなりやすさ、治癒の可能性、治療の有効性の評価、或いは酸化ストレスに起因する疾患になっているか否かの診断に役立つものである。HODEとしては、具体的には9hydroxyoctadecadienoicacid13hydroxyoctadecadienoicacid10hydroxyoctadecadienoicacid12hydroxyoctadecadienoicacidが挙げられ、9HODE、13HODEが本発明の測定対象であり、酸化ストレスに起因する疾患の診断に重要なHODEである。本発明では、免疫測定法により、9HODE13HODEを特異的に検出、定量することができる。HODEの生成過程を図2に示す。HODEの免疫測定法としては、ELISA、EIA、RIA、CLIA、CLEIA、ラテックス凝集法、イムノクロマト法などが挙げられ、ELISAが好ましい。免疫測定法には、直接法、間接法、競合法、サンドイッチ法など多くの変法があり、いずれの方法を使用してもよい。図2には、間接競合法ELISAによるHODEの測定の模式図が示されている。9HODE13HODEなどは、血清アルブミン、オボアルブミンなどにより標識してプレートに吸着させることができる。サンプルは、まず還元剤で処理されて、ヒドロペルオキシド、ペルオキシド等の活性酸素との反応生成物をその還元体に導き、それ以上の分解を抑制するのが好ましい。例えば、HODEの原料であるリノール酸などは、活性酸素と反応してヒドロペルオキシドになる。これを還元体に導くと、9HODEまたは13HODEなどに変換される。なお、HODEは、哺乳動物生体内の活性酸素と反応し、さらに還元されて9HODE、13HODEなどに導かれるが、一重項酸素と反応すると10HODEまたは12HODEに変換され得る。生体サンプルを還元して過酸化物を安定なHODEに導くための還元剤としては、ヒドロペルオキシドを還元できるが、炭素-炭素二重結合、カルボキシルCOOH基、エステル基などは還元しない還元剤が使用され、例えば水素化ホウ素ナトリウムNaBH4、ソディウムシアノボロヒドリドNaCNBH3、トリフェニルホスフィンなどが挙げられる。還元反応は、還元剤を1当量から過剰量用い、メタノール、エタノールなどのアルコール又は含水アルコール中で、0°C~50°C程度の温度下に1分から5時間程度反応させることにより有利に進行する。上記の還元処理により生成する9HODE、13HODEなどのHODEは比較的安定な化合物であり、それ以上の分解は抑制される。上記で得られた還元体は、HODEの脂肪酸型のものも存在するが、多くはホスファチジルコリンなどのリン脂質、コレステロールエステル、トリグリセライド、ジグリセライドなどのグリセリンエステルとして存在する。従って、このエステルを加水分解して高級脂肪酸に導くために、アルカリ処理剤、好ましくは水酸化ナトリウム、水酸化カリウム、水酸化リチウムなどのアルカリ金属水酸化物と反応させてHODEを脂肪酸に導く。アルカリ加水分解は塩基の存在下に、室温から溶媒の沸騰する程度の温度下に10分間から24時間程度行うことにより有利に進行する。塩基としては、溶液をアルカリ性にしてエステルを加水分解できるものであれば特に限定されないが、例えばアルカリ金属水酸化物NaOHKOHLiOHなど、アルカリ土類金属水酸化物Ca2Mg2Ba2など、アルカリ金属炭酸水素塩NaHCO3KHCO3LiHCO3アルカリ金属炭酸塩Na2CO3K2CO3Li2CO3などが挙げられる。好ましい塩基はNaOHKOHLiOHなどのアルカリ金属水酸化物である。加水分解は、水中で行ってもよく、テトラヒドロフラン、アセトニトリル、エタノール、メタノール、イソプロパノール、ブタノール、アセトン、DMF,DMSO,N-メチルピロリドン、などの溶媒を水と混合して行うこともできる。このような加水分解によって、遊離形態と共にエステル形態の酸化物HODE類を測定することができる。アルカリ処理後のサンプルは、本発明の免疫測定法により測定することができる。アルカリ処理後、さらにフィルターで濾過することが望ましい。濾過に使用されるフィルターとしては、カットオフ値が2000~100000Da程度、好ましくは3000~50000Da程度、好ましくは5000~30000Da程度である。フィルターとしては例えばYM10フィルター日本ミリポア株式会社製を使用することができる。本発明の免疫測定キットは、9HODEもしくは13HODEを特異的に認識し、9HODE、13HODEを実質的に認識しない抗体を必須成分として含み、該抗体に対する標識された抗体をさらに含むのが好ましい。本発明のキットは抗体の他にヒト由来のサンプルを還元し、ヒドロペルオキシド等の過酸化物をアルコールに導くための還元剤、および、エステル型のヒドロペルオキシドを遊離のカルボン酸に鹸化するためのアルカリ処理剤を含んでいてもよい。キットに含まれる還元剤は、サンプルの過酸化物を還元するための過剰量含まれるのが好ましく、例えば1サンプルあたり0.1~100mg程度或いは3マイクロモル~3ミリモル使用される。好ましい還元剤は、トリフェニルホスフィンである。また、アルカリ処理剤はエステルを加水分解できる量であれば特に限定されないが、例えば1~1000mg程度或いは02~20ミリモル使用される。本発明の免疫測定キットには、さらに還元剤をサンプルに加えた還元反応に使用される溶剤を含むことができる。好ましい溶剤としては、メタノール、エタノール、n-プロパノールおよびイソプロパノールなどのアルコール系溶剤が例示される。本発明で診断される、酸化ストレスに起因する疾患としては、アルツハイマー病、血管性認知症、ウイルス性肝炎A型、B型、C型、糖尿病、動脈硬化、腎症関連疾患、メタボリックシンドロームなどが挙げられる。本発明の抗体の作製方法は特に限定されず、公知の方法に準じて9HODE及び/又は13HODEを免疫原として公知の方法により動物を免疫したりし、当該分野で知られているあるいは汎用されている方法、例えばケラー、ミルシュタインらの方法Nature,256:495-97,1975あるいはそれに準じて製造することができる。以下に本発明のモノクローナル抗体の作製について詳細に説明する。本発明のモノクローナル抗体は、ミエローマ細胞を用いての細胞融合技術を利用して得られたモノクローナル抗体であり、例えば次のような工程により作製できる。しかし、ミエローマ細胞を用いた場合にだけ限定されるものではない。抗原となる9HODE及び/又は13HODEは、そのまま適当なアジュバントと混合して動物を免疫するのに使用できるが、免疫原性コンジュゲートとして、必要に応じて適当なアジュバントと混合して動物を免疫することが望ましい。また、免疫原性コンジュゲートは、9HODE及び/又は13HODEを含む免疫原を適当な縮合剤を介して種々の担体と結合させて作製できる。担体がタンパク質の場合、担体タンパク質類は活性化され得る。活性化は、活性エステルニトロフェニルエステル基、ペンタフルオロフェニルエステル基、1-ベンゾトリアゾールエステル基、N-スクシンイミドエステル基などにすることにより、実施できる。担体としては、キーホールリンペットヘモシアニンKLH、血清アルブミンBSA、HSA、卵白アルブミン、グロブリン、ポリリジンなどのポリペプタイド、細菌菌体成分、例えばBCGなどが挙げられる。動物を免疫するには、例えば村松繁、他編、実験生物学講座14、免疫生物学、丸善株式会社、昭和60年、日本生化学会編、続生化学実験講座5、免疫生化学研究法、東京化学同人、1986年、または、日本生化学会編、新生化学実験講座12、分子免疫学III、抗原抗体補体、東京化学同人、1992年などに記載されている方法に準じて行うことができる。抗原と共に用いられるアジュバントとしては、例えばフロイント完全アジュバント、リビRibiアジュバント、百日咳ワクチン、BCG、リピッドA、リポソーム、水酸化アルミニウム、シリカなどが挙げられる。免疫は、例えばBALB/cなどのマウスをはじめとする動物を使用して行われる。抗原の投与量は、例えばマウスに対して約1~400μg/動物で、一般には宿主動物の腹腔内や皮下に注射し、以後1~4週間おきに、より好ましくは1~2週間ごとに腹腔内、皮下、静脈内あるいは筋肉内に追加免疫を2~10回程度反復して行う。免疫用のマウスとしてはBALB/c系マウスの他、BALB/c系マウスと他系マウスとのF1マウスなどを用いることもできる。必要に応じて抗体価測定系を調製し、抗体価を測定して動物免疫の程度を確認できる。細胞融合に使用される無限増殖可能株腫瘍細胞株としては免疫グロブリンを産生しない細胞株から選ぶことができ、例えばP3-NS-1-Ag4-1NS-1,Eur.J.Immunol.,6:511-519,1976、SP2/0-Ag14SP2,Nature,276:269~270,1978、マウスミエローマMOPC-21セルライン由来のP3-X63-Ag8-U1P3U1,Curr.topicsMicrobiol.Immunol.,81:1-7,1978、P3-X63-Ag8X63,Nature,256:495-497,1975、P3-X63-Ag8-653653,J.Immunol.,123:1548-1550,1979などを用いることができる。上記工程に従い免疫された動物、例えばマウスは最終免疫後、2~5日後にその脾臓が摘出され、それから脾細胞懸濁液を得る。脾細胞の他、生体各所のリンパ節細胞を得て、それを細胞融合に使用することもできる。こうして得られた脾細胞懸濁液と上記ミエローマ細胞株を、例えば最小必須培地MEM培地、DMEM培地、RPMI-1640培地などの細胞培地中に置き、細胞融合剤、例えばポリエチレングリコールを添加する。細胞融合剤としては、この他各種当該分野で知られたものを用いることができ、この様なものとしては不活性化したセンダイウイルスHVJ:HemagglutinatingVirusofJapanなども挙げられる。好ましくは、例えば30~60のポリエチレングリコールを0.5~2ml加えることができ、分子量が1,000~8,000のポリエチレングリコールを用いることができ、さらに分子量が1,000~4,000のポリエチレングリコールがより好ましく使用できる。融合培地中でのポリエチレングリコールの濃度は、例えば30~60となるようにすることが好ましい。必要に応じて、例えばジメチルスルホキシドなどを少量加え、融合を促進することもできる。融合に使用する脾細胞リンパ球:ミエローマ細胞株の割合は、例えば1:1~20:1とすることができるが、より好ましくは4:1~10:1とすることができる。融合反応を1~10分間行い、次にRPMI-1640培地などの細胞培地を加える。融合反応処理は複数回行うこともできる。融合反応処理後、遠心などにより細胞を分離した後選択用培地に移す。ハイブリドーマの選択用培地としては、例えばヒポキサンチン、アミノプテリン及びチミジンを含む、FCS含有MEM培地、DMEM培地、IMDM培地、RPMI-1640培地などの培地が挙げられる。選択培地交換の方法は、一般的には培養プレートに分注した容量と等容量を翌日加え、その後1~3日ごとにHAT培地で半量ずつ交換するように処理することができるが、適宜これに変更を加えて行うこともできる。また融合後8~16日目には、アミノプテリンを除いた、所謂HT培地で1~4日ごとに培地交換をすることができる。フィーダーとして、例えばマウス胸腺細胞を使用することもでき、それが好ましい場合がある。ハイブリドーマの増殖の盛んな培養ウェルの培養上清を、例えば放射免疫分析RIA、酵素免疫分析ELISA、蛍光免疫分析FIAなどの測定系、あるいは蛍光惹起細胞分離装置FACSなどで、HODEを抗原として用いたり、あるいは標識抗マウス抗体を用いて目的抗体を測定するなどでスクリーニングする。その後、目的抗体を産生しているハイブリドーマをクローニングする。クローニングは、寒天培地中でコロニーをピックアップするか、あるいは限界希釈法により行う。より好ましくは限界希釈法により行うことができる。クローニングは複数回行うことが好ましい。得られたハイブリドーマ株は、FCS含有またはFCSを含まないMEM培地、DMEM培地、IMDM培地、RPMI-1640培地などの適当な増殖用培地中で培養し、その培地上清から所望のモノクローナル抗体を得ることができる。大量の抗体を得るためには、ハイブリドーマを腹水化することが挙げられる。この場合、ミエローマ細胞由来の動物と同系の組織適合性動物の腹腔内に各ハイブリドーマを移植し、増殖させるか、あるいはヌードマウスなどに各ハイブリドーマを移植し、増殖させ、該動物の腹水中に産生されたモノクローナル抗体を回収して得ることができる。動物はハイブリドーマの移植に先立ち、プリスタン2,6,10,14-テトラメチルペンタデカンなどの鉱物油を腹腔内投与しておくことができ、その処理後、ハイブリドーマを増殖させ、腹水を採取することもできる。その腹水液をそのまま、あるいは従来公知の方法、例えば硫酸アンモニウム沈殿法などの塩析、セファデックスなどによるゲルろ過法、イオン交換クロマトグラフィー法、電気泳動法、透析、限外ろ過法、アフィニティークロマトグラフィー法、高速液体クロマトグラフィー法などにより精製してモノクローナル抗体として用いることができる。より好ましくは、モノクローナル抗体を含有する腹水液を硫安分画した後、DEAB-セファロースのような陰イオン交換ゲル及びプロテインAカラムのようなアフィニティーカラムなどを用いて精製分離処理できる。さらに好ましくは抗原又は抗原断片例えば合成ペプチド、組換え抗原タンパク質あるいはペプチド、抗体が特異的に認識する部位などを固定化したアフィニティークロマトグラフィー、プロテインAを固定化したアフィニティークロマトグラフィーなどを用いて精製分離処理できる。こうして大量に得られた抗体の核酸配列を決定したり、ハイブリドーマ株から得られた抗体をコードする核酸配列を利用して、遺伝子組換え技術により抗体を作製することも可能である。さらに、これら抗体をトリプシン、パパイン、ペプシンなどの酵素により処理して、場合により還元して得られるFab、Fab、Fab2といった抗体フラグメントにして使用してもよい。抗体は、酵素ペルオキシダーゼ、アルカリホスファターゼあるいはβ-D-ガラクトシダーゼなど、化学物質、蛍光物質あるいは放射性同位元素などにより標識しても良い。以下、本発明を実施例を用いてより詳細に説明するが、本発明はこれら実施例に限定されない。実施例19HODEもしくは13HODEを特異的に検出する抗体の作製9HODEもしくは13HODEを、1Ethyl33dimethylaminopropylcarbodiimide、Nhydrosuccinimideとともにジメチルホルムアミド06mlに溶解し、アルゴンガス封入して24時間インキュベーションした。24時間後、6mgのkeyholelimpethemocyanin含有タンパク質溶液で希釈を加え、さらに4時間インキュベーションした後、PBSで一晩透析して抗原を調製した。Balbcマウスに対し、KLH9HODEもしくはKLH13HODEとFreund’scompleteadjuvantを等量シリンジ内で混合し、乳化させたものを、01ml匹腹腔内投与を行い免疫した。bovineserumalbumin9HODEもしくはBSA13HODEに対する抗体力価の上昇が見られたマウスに対して、細胞融合を行う3日前にKLH9HODEもしくはKLH13HODEを眼底静脈に投与して最終免疫を実施した。免疫したマウスをエーテル麻酔したあと頚椎脱臼により屠殺、開腹して脾臓を摘出した。脾細胞を取り出しfetalbovineserumfreeDulbecco’smodifiedEaglemediumにて2回洗浄し、脾細胞とミエローマ細胞の数が751となるように混合して細胞融合処理を行った。1500rpm5min遠心した沈殿にpolyethyleneglycol1mlを添加し90秒間振とうした後、FBSfreeDMEM26mlをゆっくりと添加した。その後、1000rpmで5分遠心し細胞を回収、HAT培地80mlを加え96穴マイクロプレートに蒔き、CO2インキュベーターに入れ培養した。細胞融合処理をして10日後に、BSA9HODEもしくはBSA13HODEを用いて、ハイブリドーマのELISA法による初回スクリーニングを行った。スクリーニングの結果、BSA9HODEもしくはBSA13HODEとの反応性が特に顕著なクローンについて限界希釈法によるクローニングを2回行い、BSA9HODEに特異的なモノクローナル抗体細胞株、BSA13HODEに特異的なモノクローナル抗体細胞株を得た。Hybridomaclone4A91株は、独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センターあて名:〒3058566日本国茨城県つくば市東1丁目1番地1中央第6に受託番号FERMP22169受託日2011年9月8日として寄託されている。Hybridomaclone12131株は、独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センターあて名:〒3058566日本国茨城県つくば市東1丁目1番地1中央第6に受託番号FERMP22170受託日2011年9月8日として寄託されている。Hybridomaclone12135株は、独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センターあて名:〒3058566日本国茨城県つくば市東1丁目1番地1中央第6に受託番号FERMP22171受託日2011年9月8日として寄託されている。実施例2ELISAによる9HODEの測定以下の実施例で、血漿の鹸化、還元、フィルター処理は、以下のプロトコールに従って実施した。血漿のけん化還元プロトコール準備:100mMdibutylhydroxytolueneinmethanolTriphenylphosphineSIGMAALDRICH1mMPh3PinMeOHwith100mMBHT1MpotassiumhydroxideinMeOH10CH3COOHinH2OChloroform酢酸エチル41各種内部標準10mgl13HODEd4方法血漿サンプル:200μlplasmaに300μlPBSを加える1mMPh3PinMeOHliquidchromatographytandemmassspectrometry用には各内部標準を添加する。内部標準は1サンプル当たり5μlずつを500μlの100μMBHTinMeOHに混合。窒素置換後にふたを閉めて30分間室温にて放置500μlの1MKOHinMeOHを加えて30分間40°C加温2mlの10CH3COOHを加える。5mlCHCl3酢酸エチル41を加えて1分間振盪混合。4°C3000Gで10分間遠心上層およびタンパク層を吸引除去する。下層約5mlをN2ガスで約1mlまで濃縮する。この過程で、血漿サンプルは蛋白の混入を抑えるためにパスツールで新しいチューブに移してからN2ガスでサンプルが1mlくらいまで濃縮する。1mlくらいまで濃縮されたらエッペンチューブに移して完全乾固。できるだけ水分、蛋白の混入がないように注意する。LCMSMS用サンプルは1mlまで濃縮しエッペンに移してN2ガスで完全に乾固。MeOHH2Oを200ml加えて振盪混合。10000rpm×5min遠心上清をサンプルとする。ELISA用の血漿サンプルのFilter処理準備:FilterMicroconCentrifugalFilterUnitsUltracelYM100、YM50、YM30、YM10前処理24時間以上前に:i500μlの005Tween20含有PBS005PBSTをFilterに入れ10000G10minで遠心005PBSTに浸しておく前処理サンプル処理直前005PBST300μl入れ20°C、10000Gで20分間遠心フィルターを上下反転させて20°C、1000Gで3分間遠心フィルターが乾かないようにふたをしておく。血漿サンプルの処理前日に完全乾固し、20°Cに保存してある血漿サンプルを005PBST200μlで再溶解する。5倍濃縮となる4°C、4100rpmで10分間遠心エッペンに移して4°C、15000rpmで10分間遠心フィルターに載せて20°C、10000G~15000Gで2030分間遠心ELISAによる9HODEの測定以下のプロトコールに従い、実施例1で得られた抗体を用いて9HODEを測定した。ELISAprotocol前日の前処理OVA9HODEを025mgwellでMaxsorb96wellヌンク社製にコーティングし、4°Cで終夜保存。翌日の測定005PBSTでwash×31BSAPBS200μlで37°C2hrブロッキング標準STD各濃度のHODE120μlinPBSと1000倍希釈4A91抗体120ul01BSAinPBSで希釈をエッペン内で混ぜた後37°Cで1時間プレインキュベーション005PBSTでwash×3iiiで作成したサンプルを100μlずつwellに入れて、シェーカーで振盪しながら37°Cで2時間インキュベート005PBSTでwash×3二次抗体として5000倍希釈したHRP標識DonkeyantimouseIgG01BSAinPBSで希釈を100μlwellで添加しシェーカーで振盪しながら37°Cで1時間インキュベート。005PBSTでwash×3tetramethylbenzidene溶液を100μlwellで添加し37°Cで15~30分間インキュベート。1NH2SO4100μlwell添加し発色反応を停止する。吸光度450nm620nmを測定。結果を図3に示す。図3より定量可能範囲は625500nMであることが明らかになった。血漿サンプルをけん化、還元し5倍濃縮し、フィルターろ過してサンプルとした。このサンプルを上記プロトコールに従い測定した。測定は、血漿サンプル自体と、血漿サンプルに20nMの9HODEを加えたサンプルの測定結果を以下の表1に示す。実施例3ELISAによる9HODEの測定実施例2のOVA9HODEに代えて、BSA9HODEを作製し、実施例2と同様にして9HODEを定量した。その結果、定量可能範囲は4125nMの範囲であった。ヒトの9HODEの測定値は、550nM程度であるので、BSA9HODEを使用すれば、血漿サンプルの濃縮は不要である。また、還元と鹸化の操作は、なくても測定できる。実施例4他のHODE、リノール酸、アラキドン酸由来酸化生成物hydroxyeicosatetraenoicacidHETEとの反応性実施例2のプロトコールに従って、9HODE、9HODE、13HODE、13HODE、リノール酸、5HETE、12HETE、15HETEを定量した。本発明の4A91抗体は、9HODEを特異的に認識することが明らかになった。実施例5実施例3のBSA9HODEを使用し、フィルターとしてYM100、YM50、YM30、YM10を用い、ヒト血漿サンプルを測定した。結果を表2に示す。YM100、YM50、YM30、YM10のカットオフ値は分子量で10万、5万、3万、1万である。サンプルを還元、けん化処理し、YM10フィルターで処理することで、LCMSMSとかなり近いデータが得られた。実施例6ELISAによる13HODEの測定実施例2のOVA9HODEに代えて、BSA13HODEを作製し、実施例2と同様にして13HODEを定量した。実施例7他のHODE、リノール酸との反応性実施例4に従って、9HODE、9HODE、13HODE、13HODE、リノール酸を定量した。本発明の12131抗体もしくは12135抗体は、13HODEを特異的に認識することが明らかになった。"