"下記a及びbのオリゴヌクレオチドからなるオリゴヌクレオチド対、下記c及びdのオリゴヌクレオチドからなるオリゴヌクレオチド対、下記e及びfのオリゴヌクレオチドからなるオリゴヌクレオチド対、下記g及びhのオリゴヌクレオチドからなるオリゴヌクレオチド対、並びに下記i及びjのオリゴヌクレオチドからなるオリゴヌクレオチド対からなる群より選ばれる少なくとも1種のオリゴヌクレオチド対を用いてネオサルトリアNeosartorya属真菌の種レベルでの同定を行う工程を含む、ネオサルトリアNeosartorya属真菌の検出方法。a配列番号1に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号1に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリアNeosartorya属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドb配列番号2に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号2に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリアNeosartorya属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドc配列番号3に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号3に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリアNeosartorya属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドd配列番号4に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号4に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリアNeosartorya属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドe配列番号5に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号5に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリアNeosartorya属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドf配列番号6に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号6に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリアNeosartorya属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドg配列番号7に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号7に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリアNeosartorya属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドh配列番号8に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号8に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリアNeosartorya属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドi配列番号9に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号9に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリアNeosartorya属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドj配列番号10に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号10に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリアNeosartorya属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチド同定を行うために、前記少なくとも1種のオリゴヌクレオチド対を用いてネオサルトリア属真菌のβ-チューブリン遺伝子及び/又はカルモジュリン遺伝子の部分塩基配列を増幅し、増幅産物の有無を確認する、請求項1記載の検出方法。前記増幅反応をポリメラーゼ連鎖反応PCR法によって行う、請求項2記載の検出方法。前記ネオサルトリア属真菌が、ネオサルトリアグラブラNeosartoryaglabra、ネオサルトリアヒラツカエNeosartoryahiratsukae、ネオサルトリアシュードフィシェリNeosartoryapseudofischeri、ネオサルトリアフィシェリNeosartoryafischeri及びネオサルトリアスピノサNeosartoryaspinosaの少なくともいずれか1種である、請求項1~3のいずれか記載の検出方法。前記a及びbのオリゴヌクレオチドを核酸プライマーとして用いて前記ポリメラーゼ連鎖反応法を行い、ネオサルトリアグラブラのβ-チューブリン遺伝子の部分塩基配列を増幅する、請求項3又は4記載の検出方法。前記c及びdのオリゴヌクレオチドを核酸プライマーとして用いて前記ポリメラーゼ連鎖反応法を行い、ネオサルトリアヒラツカエのβ-チューブリン遺伝子の部分塩基配列を増幅する、請求項3又は4記載の検出方法。前記e及びfのオリゴヌクレオチドを核酸プライマーとして用いて前記ポリメラーゼ連鎖反応法を行い、ネオサルトリアシュードフィシェリのカルモジュリン遺伝子の部分塩基配列を増幅する、請求項3又は4記載の検出方法。前記g及びhのオリゴヌクレオチドを核酸プライマーとして用いて前記ポリメラーゼ連鎖反応法を行い、ネオサルトリアフィシェリのカルモジュリン遺伝子の部分塩基配列を増幅する、請求項3又は4記載の検出方法。前記i及びjのオリゴヌクレオチドを核酸プライマーとして用いて前記ポリメラーゼ連鎖反応法を行い、ネオサルトリアスピノサのカルモジュリン遺伝子の部分塩基配列を増幅する、請求項3又は4記載の検出方法。下記a及びbのオリゴヌクレオチドからなるオリゴヌクレオチド対、下記c及びdのオリゴヌクレオチドからなるオリゴヌクレオチド対、下記e及びfのオリゴヌクレオチドからなるオリゴヌクレオチド対、下記g及びhのオリゴヌクレオチドからなるオリゴヌクレオチド対、並びに下記i及びjのオリゴヌクレオチドからなるオリゴヌクレオチド対からなる群より選ばれる少なくとも1種のオリゴヌクレオチド対を用いて、下記k~tのいずれかの塩基配列で表される核酸の存在を確認する、ネオサルトリアNeosartorya属真菌の検出方法。a配列番号1に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号1に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリアNeosartorya属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドb配列番号2に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号2に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリアNeosartorya属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドc配列番号3に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号3に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリアNeosartorya属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドd配列番号4に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号4に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリアNeosartorya属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドe配列番号5に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号5に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリアNeosartorya属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドf配列番号6に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号6に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリアNeosartorya属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドg配列番号7に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号7に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリアNeosartorya属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドh配列番号8に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号8に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリアNeosartorya属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドi配列番号9に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号9に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリアNeosartorya属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドj配列番号10に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号10に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリアNeosartorya属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドk配列番号11に記載のβ-チューブリン遺伝子の部分塩基配列又はその相補配列l配列番号11に記載の塩基配列において1又は数個の塩基が欠失、置換、挿入又は付加されておりかつネオサルトリアグラブラNeosartoryaglabraの種レベルでの検出に使用できる塩基配列、又はその相補配列m配列番号12に記載のβ-チューブリン遺伝子の部分塩基配列又はその相補配列n配列番号12に記載の塩基配列において1又は数個の塩基が欠失、置換、挿入又は付加されておりかつネオサルトリアヒラツカエNeosartoryahiratsukaeの種レベルでの検出に使用できる塩基配列、又はその相補配列o配列番号13に記載のカルモジュリン遺伝子の部分塩基配列又はその相補配列p配列番号13に記載の塩基配列において1又は数個の塩基が欠失、置換、挿入又は付加されておりかつネオサルトリアシュードフィシェリNeosartoryapseudofischeriの種レベルでの検出に使用できる塩基配列、又はその相補配列q配列番号14に記載のカルモジュリン遺伝子の部分塩基配列又はその相補配列r配列番号14に記載の塩基配列において1又は数個の塩基が欠失、置換、挿入又は付加されておりかつネオサルトリアフィシェリNeosartoryafischeriの種レベルでの検出に使用できる塩基配列、又はその相補配列s配列番号15に記載のカルモジュリン遺伝子の部分塩基配列又はその相補配列t配列番号15に記載の塩基配列において1又は数個の塩基が欠失、置換、挿入又は付加されておりかつネオサルトリアスピノサNeosartoryaspinosaの種レベルでの検出に使用できる塩基配列、又はその相補配列前記少なくとも1種のオリゴヌクレオチド対を用いて前記k~tのいずれかの塩基配列の一部を増幅し、増幅産物の有無を確認し、前記k~tのいずれかの塩基配列で表される核酸の存在を確認する、請求項10記載の検出方法。前記増幅反応をポリメラーゼ連鎖反応PCR法によって行う、請求項11記載の検出方法。前記ネオサルトリア属真菌が、ネオサルトリアグラブラNeosartoryaglabra、ネオサルトリアヒラツカエNeosartoryahiratsukae、ネオサルトリアシュードフィシェリNeosartoryapseudofischeri、ネオサルトリアフィシェリNeosartoryafischeri及びネオサルトリアスピノサNeosartoryaspinosaの少なくともいずれか1種である、請求項7~9のいずれか記載の検出方法。前記a及びbのオリゴヌクレオチドを核酸プライマーとして用いて前記ポリメラーゼ連鎖反応法を行い、前記k又はlの塩基配列の一部を増幅し、ネオサルトリアグラブラの同定を行う、請求項10~13のいずれか記載の検出方法。前記c及びdのオリゴヌクレオチドを核酸プライマーとして用いて前記ポリメラーゼ連鎖反応法を行い、前記m又はnの塩基配列の一部を増幅し、ネオサルトリアヒラツカエの同定を行う、請求項10~13のいずれか記載の検出方法。前記e及びfのオリゴヌクレオチドを核酸プライマーとして用いて前記ポリメラーゼ連鎖反応法を行い、前記o又はpの塩基配列の一部を増幅し、ネオサルトリアシュードフィシェリの同定を行う、請求項10~13のいずれか記載の検出方法。前記g及びhのオリゴヌクレオチドを核酸プライマーとして用いて前記ポリメラーゼ連鎖反応法を行い、前記q又はrの塩基配列の一部を増幅し、ネオサルトリアフィシェリの同定を行う、請求項10~13のいずれか記載の検出方法。前記i及びjのオリゴヌクレオチドを核酸プライマーとして用いて前記ポリメラーゼ連鎖反応法を行い、前記s又はtの塩基配列の一部を増幅し、ネオサルトリアスピノサの同定を行う、請求項10~13のいずれか記載の検出方法。下記a及びbのオリゴヌクレオチド、下記c及びdのオリゴヌクレオチド、下記e及びfのオリゴヌクレオチド、下記g及びhのオリゴヌクレオチド、又は下記i及びjのオリゴヌクレオチドからなる、オリゴヌクレオチド対。a配列番号1に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号1に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリアNeosartorya属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドb配列番号2に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号2に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリアNeosartorya属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドc配列番号3に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号3に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリアNeosartorya属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドd配列番号4に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号4に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリアNeosartorya属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドe配列番号5に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号5に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリアNeosartorya属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドf配列番号6に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号6に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリアNeosartorya属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドg配列番号7に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号7に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリアNeosartorya属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドh配列番号8に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号8に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリアNeosartorya属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドi配列番号9に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号9に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリアNeosartorya属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドj配列番号10に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号10に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリアNeosartorya属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチド前記オリゴヌクレオチドが核酸プライマーである、請求項19記載のオリゴヌクレオチド対。前記a及びbのオリゴヌクレオチドが、ポリメラーゼ連鎖反応PCR法によって下記k及び/又はlの塩基配列の一部を増幅でき、ネオサルトリアグラブラNeosartoryaglabraを種レベルで特異的に検出するための核酸プライマーとして機能し得る、請求項19又は20記載のオリゴヌクレオチド対。k配列番号11に記載のβ-チューブリン遺伝子の部分塩基配列又はその相補配列l配列番号11に記載の塩基配列において1又は数個の塩基が欠失、置換、挿入又は付加されておりかつネオサルトリアグラブラNeosartoryaglabraの種レベルでの検出に使用できる塩基配列、又はその相補配列前記c及びdのオリゴヌクレオチドが、ポリメラーゼ連鎖反応PCR法によって下記m及び/又はnの塩基配列の一部を増幅でき、ネオサルトリアヒラツカエNeosartoryahiratsukaeを種レベルで特異的に検出するための核酸プライマーとして機能し得る、請求項19又は20記載のオリゴヌクレオチド対。m配列番号12に記載のβ-チューブリン遺伝子の部分塩基配列又はその相補配列n配列番号12に記載の塩基配列において1又は数個の塩基が欠失、置換、挿入又は付加されておりかつネオサルトリアヒラツカエNeosartoryahiratsukaeの種レベルでの検出に使用できる塩基配列、又はその相補配列前記e及びfのオリゴヌクレオチドが、ポリメラーゼ連鎖反応PCR法によって下記o及び/又はpの塩基配列の一部を増幅でき、ネオサルトリアシュードフィシェリNeosartoryapseudofischeriを種レベルで特異的に検出するための核酸プライマーとして機能し得る、請求項19又は20記載のオリゴヌクレオチド対。o配列番号13に記載のカルモジュリン遺伝子の部分塩基配列又はその相補配列p配列番号13に記載の塩基配列において1又は数個の塩基が欠失、置換、挿入又は付加されておりかつネオサルトリアシュードフィシェリNeosartoryapseudofischeriの種レベルでの検出に使用できる塩基配列、又はその相補配列前記g及びhのオリゴヌクレオチドが、ポリメラーゼ連鎖反応PCR法によって下記q及び/又はrの塩基配列の一部を増幅でき、ネオサルトリアフィシェリNeosartoryafischeriを種レベルで特異的に検出するための核酸プライマーとして機能し得る、請求項19又は20記載のオリゴヌクレオチド対。q配列番号14に記載のカルモジュリン遺伝子の部分塩基配列又はその相補配列r配列番号14に記載の塩基配列において1又は数個の塩基が欠失、置換、挿入又は付加されておりかつネオサルトリアフィシェリNeosartoryafischeriの種レベルでの検出に使用できる塩基配列、又はその相補配列前記i及びjのオリゴヌクレオチドが、ポリメラーゼ連鎖反応PCR法によって下記s及び/又はtの塩基配列の一部を増幅でき、ネオサルトリアスピノサNeosartoryaspinosaを種レベルで特異的に検出するための核酸プライマーとして機能し得る、請求項19又は20記載のオリゴヌクレオチド対。s配列番号15に記載のカルモジュリン遺伝子の部分塩基配列又はその相補配列t配列番号15に記載の塩基配列において1又は数個の塩基が欠失、置換、挿入又は付加されておりかつネオサルトリアスピノサNeosartoryaspinosaの種レベルでの検出に使用できる塩基配列、又はその相補配列下記a~jのオリゴヌクレオチドからなる群より選ばれるオリゴヌクレオチド。a配列番号1に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号1に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリアNeosartorya属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドb配列番号2に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号2に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリアNeosartorya属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドc配列番号3に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号3に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリアNeosartorya属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドd配列番号4に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号4に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリアNeosartorya属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドe配列番号5に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号5に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリアNeosartorya属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドf配列番号6に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号6に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリアNeosartorya属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドg配列番号7に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号7に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリアNeosartorya属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドh配列番号8に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号8に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリアNeosartorya属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドi配列番号9に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号9に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリアNeosartorya属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドj配列番号10に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号10に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリアNeosartorya属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチド前記オリゴヌクレオチドが核酸プローブ又は核酸プライマーである、請求項26記載の検出用オリゴヌクレオチド。前記オリゴヌクレオチドが核酸プライマーである、請求項26又は27記載の検出用オリゴヌクレオチド。前記a及びbのオリゴヌクレオチドがそれぞれ、下記k及び/又はlの塩基配列で表される核酸にハイブリダイズすることができ、ネオサルトリアグラブラNeosartoryaglabraを種レベルで特異的に検出するための核酸プローブ又は核酸プライマーとして機能し得る、請求項26~28のいずれか記載のオリゴヌクレオチド。k配列番号11に記載のβ-チューブリン遺伝子の部分塩基配列又はその相補配列l配列番号11に記載の塩基配列において1又は数個の塩基が欠失、置換、挿入又は付加されておりかつネオサルトリアグラブラNeosartoryaglabraの種レベルでの検出に使用できる塩基配列、又はその相補配列前記c及びdのオリゴヌクレオチドがそれぞれ、下記m及び/又はnの塩基配列で表される核酸にハイブリダイズすることができ、ネオサルトリアヒラツカエNeosartoryahiratsukaeを種レベルで特異的に検出するための核酸プローブ又は核酸プライマーとして機能し得る、請求項26~28のいずれか記載のオリゴヌクレオチド。m配列番号12に記載のβ-チューブリン遺伝子の部分塩基配列又はその相補配列n配列番号12に記載の塩基配列において1又は数個の塩基が欠失、置換、挿入又は付加されておりかつネオサルトリアヒラツカエNeosartoryahiratsukaeの種レベルでの検出に使用できる塩基配列、又はその相補配列前記e及びfのオリゴヌクレオチドがそれぞれ、下記o及び/又はpの塩基配列で表される核酸にハイブリダイズすることができ、ネオサルトリアシュードフィシェリNeosartoryapseudofischeriを種レベルで特異的に検出するための核酸プローブ又は核酸プライマーとして機能し得る、請求項26~28のいずれか記載のオリゴヌクレオチド。o配列番号13に記載のカルモジュリン遺伝子の部分塩基配列又はその相補配列p配列番号13に記載の塩基配列において1又は数個の塩基が欠失、置換、挿入又は付加されておりかつネオサルトリアシュードフィシェリNeosartoryapseudofischeriの種レベルでの検出に使用できる塩基配列、又はその相補配列前記g及びhのオリゴヌクレオチドがそれぞれ、下記q及び/又はrの塩基配列で表される核酸にハイブリダイズすることができ、ネオサルトリアフィシェリNeosartoryafischeriを種レベルで特異的に検出するための核酸プローブ又は核酸プライマーとして機能し得る、請求項26~28のいずれか記載のオリゴヌクレオチド。q配列番号14に記載のカルモジュリン遺伝子の部分塩基配列又はその相補配列r配列番号14に記載の塩基配列において1又は数個の塩基が欠失、置換、挿入又は付加されておりかつネオサルトリアフィシェリNeosartoryafischeriの種レベルでの検出に使用できる塩基配列、又はその相補配列前記i及びjのオリゴヌクレオチドがそれぞれ、下記s及び/又はtの塩基配列で表される核酸にハイブリダイズすることができ、ネオサルトリアスピノサNeosartoryaspinosaを種レベルで特異的に検出するための核酸プローブ又は核酸プライマーとして機能し得る、請求項26~28のいずれか記載のオリゴヌクレオチド。s配列番号15に記載のカルモジュリン遺伝子の部分塩基配列又はその相補配列t配列番号15に記載の塩基配列において1又は数個の塩基が欠失、置換、挿入又は付加されておりかつネオサルトリアスピノサNeosartoryaspinosaの種レベルでの検出に使用できる塩基配列、又はその相補配列請求項19~33のいずれか記載のオリゴヌクレオチド又はオリゴヌクレオチド対を含むネオサルトリアNeosartorya属真菌検出キット。耐熱性を有するネオサルトリア属真菌の特徴として、菌種により耐熱性が異なることが知られている。例えば、ネオサルトリア属真菌各種のD値耐熱性菌の耐熱性を表す指標の1つであり、初期の菌数を1/10にするのに必要な滅菌処理単位及びZ値耐熱性菌の耐熱性を表す指標の1つであり、前記滅菌処理単位を1/10に低減又は10倍増加させるのに必要な温度変化を測定したところ、ネオサルトリアスピノサ及びネオサルトリアグラブラについてはD85°C=96分ここで、D85°Cとは、85°Cで処理した場合に初期の菌数を1/10にするのに必要な時間、Z=14°Cすなわち、85°Cで処理した場合初期の菌数を1/10にするのには96分処理しなければならないので、処理時間9.6分96分の1/10で初期の菌数を1/10にするのには8514=99°Cでの処理が必要であり、処理時間960分96分の10倍で初期の菌数を1/10にするのには85-14=71°Cでの処理が必要であるであり、ネオサルトリアフィシェリのD85°C値は10分、Z値は10°Cである。このように、同じネオサルトリア属真菌であっても耐熱性が異なるので、飲食品業界などにおいて、菌種によって異なる耐熱性のネオサルトリア属真菌の殺菌滅菌処理条件が必要となる。さらには、ネオサルトリア属真菌として、ネオサルトリアオーストラレンシスNeosartoryaaustralensisなどが存在する。これらの菌種は他のネオサルトリア属真菌と同様高い耐熱性を有するが、前記ネオサルトリアグラブラ等とは異なり飲食品の汚染事故の報告がほとんどない。したがって、飲食品業界などにおいて危害菌の正確なリスク評価を行うには、ネオサルトリア属真菌を属レベルのみならず種レベルで同定することも重要となる。本発明は、飲食品汚染の主な原因菌の1種であるネオサルトリア属真菌を種レベルでかつ迅速に検出しうる方法を提供することを課題とする。また、本発明はこの方法に適用可能なオリゴヌクレオチド、オリゴヌクレオチド対及び検出キットを提供することを課題とする。このような課題に鑑み、本発明者等は、ネオサルトリア属真菌を種レベルで特異的に検出識別しうる新たなDNA領域を探索すべく、鋭意検討を行った。その結果、ネオサルトリア属真菌のβ-チューブリン遺伝子及び/又はカルモジュリン遺伝子の中に、他の真菌類のものとは明確に区別しうる、特異的な塩基配列を有する部位以下、可変部位ともいうが存在することを見出した。また、これらの可変部位をターゲットとすることでネオサルトリア属真菌を種レベルで特異的かつ迅速に検出できることを見出した。本発明はこの知見に基づき完成するに至った。本発明は、下記a及びbのオリゴヌクレオチドからなるオリゴヌクレオチド対、下記c及びdのオリゴヌクレオチドからなるオリゴヌクレオチド対、下記e及びfのオリゴヌクレオチドからなるオリゴヌクレオチド対、下記g及びhのオリゴヌクレオチドからなるオリゴヌクレオチド対、並びに下記i及びjのオリゴヌクレオチドからなるオリゴヌクレオチド対からなる群より選ばれる少なくとも1種のオリゴヌクレオチド対を用いてネオサルトリア属真菌の種レベルでの同定を行う工程を含む、ネオサルトリア属真菌の検出方法に関する。a配列番号1に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号1に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリア属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドb配列番号2に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号2に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリア属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドc配列番号3に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号3に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリア属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドd配列番号4に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号4に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリア属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドe配列番号5に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号5に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリア属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドf配列番号6に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号6に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリア属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドg配列番号7に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号7に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリア属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドh配列番号8に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号8に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリア属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドi配列番号9に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号9に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリア属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドj配列番号10に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号10に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリア属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドまた、本発明は、前記a及びbのオリゴヌクレオチドからなるオリゴヌクレオチド対、前記c及びdのオリゴヌクレオチドからなるオリゴヌクレオチド対、前記e及びfのオリゴヌクレオチドからなるオリゴヌクレオチド対、前記g及びhのオリゴヌクレオチドからなるオリゴヌクレオチド対、並びに前記i及びjのオリゴヌクレオチドからなるオリゴヌクレオチド対からなる群より選ばれる少なくとも1種のオリゴヌクレオチド対を用いて、下記k~tのいずれかの塩基配列で表される核酸の存在を確認する、ネオサルトリア属真菌の検出方法に関する。k配列番号11に記載のβ-チューブリン遺伝子の部分塩基配列又はその相補配列l配列番号11に記載の塩基配列において1又は数個の塩基が欠失、置換、挿入又は付加されておりかつネオサルトリアグラブラの種レベルでの検出に使用できる塩基配列、又はその相補配列m配列番号12に記載のβ-チューブリン遺伝子の部分塩基配列又はその相補配列n配列番号12に記載の塩基配列において1又は数個の塩基が欠失、置換、挿入又は付加されておりかつネオサルトリアヒラツカエの種レベルでの検出に使用できる塩基配列、又はその相補配列o配列番号13に記載のカルモジュリン遺伝子の部分塩基配列又はその相補配列p配列番号13に記載の塩基配列において1又は数個の塩基が欠失、置換、挿入又は付加されておりかつネオサルトリアシュードフィシェリの種レベルでの検出に使用できる塩基配列、又はその相補配列q配列番号14に記載のカルモジュリン遺伝子の部分塩基配列又はその相補配列r配列番号14に記載の塩基配列において1又は数個の塩基が欠失、置換、挿入又は付加されておりかつネオサルトリアフィシェリの種レベルでの検出に使用できる塩基配列、又はその相補配列s配列番号15に記載のカルモジュリン遺伝子の部分塩基配列又はその相補配列t配列番号15に記載の塩基配列において1又は数個の塩基が欠失、置換、挿入又は付加されておりかつネオサルトリアスピノサの種レベルでの検出に使用できる塩基配列、又はその相補配列また、本発明は、前記a及びbのオリゴヌクレオチド、前記c及びdのオリゴヌクレオチド、前記e及びfのオリゴヌクレオチド、前記g及びhのオリゴヌクレオチド、又は前記i及びjのオリゴヌクレオチドからなる、オリゴヌクレオチド対に関する。また、本発明は、前記a~jのオリゴヌクレオチドからなる群より選ばれるオリゴヌクレオチドに関する。また、本発明は、前記オリゴヌクレオチド又はオリゴヌクレオチド対を含むネオサルトリア属真菌検出キットに関する。本発明の検出方法は、飲食品の汚染事故の主な原因菌の1つであるネオサルトリア属真菌を種レベルでかつ迅速に検出することができる。また、本発明オリゴヌクレオチド、オリゴヌクレオチド対及び検出キットは、前記方法に好適に適用することができる。本発明は、ネオサルトリアNeosartorya属真菌のβ-チューブリン遺伝子又はカルモジュリン遺伝子の特定の部分塩基配列、すなわち本遺伝子に存在するネオサルトリア属真菌の種にそれぞれ特異的な塩基配列部位可変部位にストリンジェントな条件でハイブリダイズ可能なオリゴヌクレオチド対を用いてネオサルトリア属真菌の検出を行い、ネオサルトリア属真菌を種レベルで特異的に識別検出する方法である。ここで、可変部位とは、β-チューブリン遺伝子又はカルモジュリン遺伝子中で塩基変異が蓄積しやすい部位であり、この部位の塩基配列はネオサルトリア属真菌の種の間で大きく異なる。本明細書において、β-チューブリンとは微小管を構成するタンパク質であり、β-チューブリン遺伝子とは、β-チューブリンをコードする遺伝子である。また、カルモジュリンとは真核生物に広く分布するカルシウム結合タンパク質の1種で、カルシウムがカルモジュリンに結合することによりカルモジュリンキナーゼ、カルシニューリン等の酵素の活性を制御するタンパク質であり、カルモジュリン遺伝子とは、カルモジュリンをコードする遺伝子である。本発明におけるネオサルトリア属真菌とは、マユハキタケ科Trichocomaceaeに属する不整子嚢菌類を意味する。ネオサルトリア属真菌は、75°C、30分間の加熱処理後であっても生存可能な子嚢胞子を形成する耐熱性菌類である。また、ネオサルトリアグラブラとはネオサルトリア属真菌の1種であり、子嚢胞子のレンズ面に微細な突起を有し、2枚の赤道面の帯状隆起が離れ、その間の溝に微細な突起が2列平行に並ぶ形態を有する菌種である。ネオサルトリアグラブラは、果汁飲料、焼き菓子などの汚染事故の原因菌として知られている。また、ネオサルトリアヒラツカエとはネオサルトリア属真菌の1種であり、子嚢胞子が大型で、レンズ面が微細な網目構造を有し、2枚の赤道面の帯状隆起の幅が狭く互いに密着する形態を有する菌種である。ネオサルトリアヒラツカエは、果汁ゼリー、野菜飲料などの汚染事故の原因菌として知られている。また、ネオサルトリアシュードフィシェリとはネオサルトリア属真菌の1種であり、子嚢胞子が大型で、レンズ面に三角形と短い筋状の突起を有し、2枚の赤道面の帯状隆起がある形態を有する菌種である。ネオサルトリアシュードフィシェリは、飲料、缶詰などの汚染事故の原因菌として知られている。また、ネオサルトリアフィシェリとはネオサルトリア属真菌の1種であり、子嚢胞子のレンズ面が網目構造であり、2枚の赤道面の帯状面隆起がほぼ密着する形態を有する菌種である。ネオサルトリアフィシェリは、缶詰、ゼリーなどの汚染事故の原因菌として知られている。また、ネオサルトリアスピノサとはネオサルトリア属真菌の1種であり、子嚢胞子のレンズ面に刺状突起を有し、2枚の赤道面の帯状隆起がある形態の菌種である。ネオサルトリアスピノサは、果汁飲料、缶詰などの汚染事故の原因菌として知られている。ネオサルトリア属真菌に限らず、真菌全般として、一般的に形態学的に別種に分類可能であっても、遺伝子レベルで識別することが困難な場合がある。例えば、前記ネオサルトリアスピノサに極めて類縁な菌種として、ネオサルトリアコレアナNeosartoryacoreana、ネオサルトリアラシニオサNeosartoryalacinosa及びネオサルトリアパウリステンシスNeosartoryapaulistensisが存在する。これらの菌種は別種として報告されることもあるが、形態学的な違いがほとんど存在しない。さらには、系統分類の指標に用いられる遺伝子の相同性が極めて高く、遺伝子レベルでこれらの菌種を識別することが難しい。真菌の分類は、まず、形態的特徴によって菌種が提案される。したがって、培養条件等によって形態が変化した場合、本来は同一の菌種であるものが新種として提案されることがある。さらに、真菌は、細菌と比較して同物異名1つの菌種が複数の学名をもつことが多いことも知られている。したがって、ネオサルトリア属真菌について、別種として提案された菌種間でも、実際は同種である場合が存在する。よって、それらの菌種は耐熱性等食品での危害性も同等であると考えられるとともに、同物異名である可能性も否定できない。上記観点から、形態学的観点からは別種として分類されていても遺伝子レベルが同一の菌種について、本発明では同一の種として扱う。具体例を挙げて説明すると、ネオサルトリアスピノサ、ネオサルトリアコレアナ、ネオサルトリアラシニオサ及びネオサルトリアパウリステンシスは別種として提案されることもあるが、形態学的だけではなく、下記表1に示すように遺伝学的にも極めて類縁性が高いため、本発明では同一の種として扱われる。すなわち、本明細書において、ネオサルトリアスピノサには、遺伝子レベルが同一であるネオサルトリアコレアナ、ネオサルトリアラシニオサ及びネオサルトリアパウリステンシスを含むものである。なお、本明細書において遺伝子レベルが同一とは、遺伝的進化速度が速い複数の遺伝子例えば、β-チューブリン遺伝子、カルモジュリン遺伝子、アクチン遺伝子等の塩基配列の相同性を比較して、97以上好ましくは98以上、より好ましくは99以上の相同性を有することを意味する。塩基配列の相同性については、LipmanPearson法等によって計算される。具体的には、遺伝情報処理ソフトウェアGenetyxWinのホモロジー解析プログラムを用いて、パラメーターであるUnitsizetocompareを2として解析を行うことにより算出することができる。なお、本明細書において、ストリンジェントな条件としては、例えばMolecularCloning-ALABORATORYMANUALTHIRDEDITION[JosephSambrook,DavidW.Russell,ColdSpringHarborLaboratoryPress]記載の方法が挙げられ、例えば、6×SSC1×SSCの組成:015M塩化ナトリウム、0.015Mクエン酸ナトリウム、pH7.0、0.5SDS、5×デンハート及び100mg/mLニシン精子DNAを含む溶液にプローブとともに65°Cで8~16時間恒温し、ハイブリダイズさせる条件が挙げられる。本発明の検出方法は、ネオサルトリア属真菌のβ-チューブリン遺伝子又はカルモジュリン遺伝子中の可変部位に対応する核酸で表されるオリゴヌクレオチド対を用いることを特徴とする。発明者等は、図1~5に示すように、ネオサルトリア属を含めた種々の真菌類のβ-チューブリン遺伝子又はカルモジュリン遺伝子の塩基配列を決定し、真菌種間での遺伝的距離と塩基配列の相同性の解析を行った。すなわち、シークエンシング法により各真菌のβチューブリン遺伝子又はカルモジュリン遺伝子の塩基配列を決定し、アライメント解析により一致する塩基領域の検討を行った。その結果、β-チューブリン遺伝子又はカルモジュリン遺伝子中に同一の種内では保存性が高いが異なる種間で塩基配列の保存性が低く、種によって固有の塩基配列を有する可変部位を見い出した。この可変部位においてネオサルトリア属真菌は種固有の塩基配列を有している。そのため、当該領域はネオサルトリア属真菌を種レベルで識別同定するための遺伝学的な指標として有用である。本発明の検出方法は、下記a及びbのオリゴヌクレオチドからなるオリゴヌクレオチド対、下記c及びdのオリゴヌクレオチドからなるオリゴヌクレオチド対、下記e及びfのオリゴヌクレオチドからなるオリゴヌクレオチド対、下記g及びhのオリゴヌクレオチドからなるオリゴヌクレオチド対、並びに下記i及びjのオリゴヌクレオチドからなるオリゴヌクレオチド対からなる群より選ばれる少なくとも1種のオリゴヌクレオチド対を用いる。a配列番号1に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号1に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリア属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドb配列番号2に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号2に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリア属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドc配列番号3に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号3に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリア属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドd配列番号4に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号4に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリア属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドe配列番号5に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号5に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリア属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドf配列番号6に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号6に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリア属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドg配列番号7に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号7に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリア属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドh配列番号8に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号8に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリア属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドi配列番号9に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号9に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリア属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドj配列番号10に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号10に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつネオサルトリア属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドネオサルトリア属真菌の1種である、ネオサルトリアグラブラのβ-チューブリン遺伝子の可変部位を図1及び配列番号11に記載の塩基配列に基づき説明する。なお、配列番号11に記載の塩基配列は、ネオサルトリアグラブラCBS11155T株のβ-チューブリン遺伝子の部分塩基配列を示す。また、図1は、ネオサルトリアグラブラCBS11155T株及びその他のネオサルトリア属真菌類ネオサルトリアニシムラエCBS116047株、ネオサルトリアオーストラレンシスCBS11255T株、ネオサルトリアフェネリアエCBS59874T株、ネオサルトリアヒラツカエNHL3008T株、ネオサルトリアウダガワエCBMFA0702T株、ネオサルトリアコレアナKACC41659T株、ネオサルトリアパウリステンシスCBMFA0690T株、ネオサルトリアラシニオサKACC41657T株、ネオサルトリアスピノサCBS48365T株、ネオサルトリアフィシェリCBS54465T株、ネオサルトリアフィシェリのアナモルフに形態学的に極めて類似したアスペルギルスフミガタスIAM13869extype株及びネオサルトリアシュードフィシェリCBS20892T株のβ-チューブリン遺伝子の部分塩基配列、並びにネオサルトリアグラブラのβ-チューブリン遺伝子の塩基配列における前記a及びbのオリゴヌクレオチドが認識する塩基配列の位置関係を示す。前記aのオリゴヌクレオチド本明細書において、NglF1ともいう及び前記bのオリゴヌクレオチド本明細書において、NglR1ともいうはそれぞれ、図1に示すように、配列番号11に記載の塩基配列のうち81位~102位までの領域及び318位~340位までの領域にストリンジェントな条件でハイブリダイズ可能なオリゴヌクレオチドである。これらの領域は種間での塩基配列の保存性が低い可変領域であり、ネオサルトリアグラブラとその他の種間での塩基配列の保存性が特に低い領域であること、これらの領域の塩基配列はネオサルトリアグラブラが固有に有する塩基配列であること、を本発明者らが見出した。したがって、前記a及びbのオリゴヌクレオチドを用いて、ネオサルトリアグラブラを種レベルで特異的に識別同定することができる。具体的には、本領域にポリメラーゼによるDNAの伸長方向であるプライマーの3’末端5塩基以上がハイブリダイズするように設計すればネオサルトリアグラブラに特異的なプライマーに用いることが可能であり、それらのプライマーを用いたポリメラーゼ連鎖反応PCR法による同定が可能となる。また、本領域を10塩基以上ハイブリダイズするように設計したプローブは、ネオサルトリアグラブラのβ-チューブリン遺伝子と特異的にハイブリダイズするため、ハイブリダイズの有無によりネオサルトリアグラブラを同定することが可能となる。本発明において、前記a及びbのオリゴヌクレオチドを用いて、下記k及び/又はlの塩基配列で表される核酸好ましくは、前記可変部位の存在を確認することが好ましい。k配列番号11に記載のβ-チューブリン遺伝子の部分塩基配列又はその相補配列l配列番号11に記載の塩基配列において1又は数個好ましくは1~25個、より好ましくは1~20個、さらに好ましくは1~15個、特に好ましくは1~10個、最も好ましくは1~5個の塩基が欠失、置換、挿入又は付加されておりかつネオサルトリアグラブラの種レベルでの検出に使用できる塩基配列、又はその相補配列ネオサルトリア属真菌の1種である、ネオサルトリアヒラツカエのβ-チューブリン遺伝子の可変部位を図2及び配列番号12に記載の塩基配列に基づき説明する。なお、配列番号12に記載の塩基配列は、ネオサルトリアヒラツカエNHL3008T株のβ-チューブリン遺伝子の部分塩基配列を示す。また、図2は、ネオサルトリアヒラツカエNHL3008T株及びその他のネオサルトリア属真菌類ネオサルトリアオーストラレンシスCBS11255T株、ネオサルトリアフェネリアエCBS59874T株、ネオサルトリアグラブラCBS11155T株、ネオサルトリアニシムラエCBS116047株、ネオサルトリアウダガワエCBMFA0702T株、ネオサルトリアコレアナKACC41659T株、ネオサルトリアパウリステンシスCBMFA0690T株、ネオサルトリアラシニオサKACC41657T株、ネオサルトリアスピノサCBS48365T株、ネオサルトリアフィシェリCBS54465T株、ネオサルトリアフィシェリのアナモルフに形態学的に極めて類似したアスペルギルスフミガタスIAM13869extype株及びネオサルトリアシュードフィシェリCBS20892T株のβ-チューブリン遺伝子の部分塩基配列、並びにネオサルトリアヒラツカエのβ-チューブリン遺伝子の塩基配列における前記c及びdのオリゴヌクレオチドが認識する塩基配列の位置関係を示す。前記cのオリゴヌクレオチド本明細書において、NhiF1ともいう及び前記dのオリゴヌクレオチド本明細書において、NhiR1ともいうはそれぞれ、図2に示すように、配列番号12に記載の塩基配列のうち28位~51位までの領域及び311位~336位までの領域にストリンジェントな条件でハイブリダイズ可能なオリゴヌクレオチドである。これらの領域は種間での塩基配列の保存性が低い可変領域であり、ネオサルトリアヒラツカエとその他の種間での塩基配列の保存性が特に低い領域であること、これらの領域の塩基配列はネオサルトリアヒラツカエが固有に有する塩基配列であること、を本発明者らが見出した。したがって、前記c及びdのオリゴヌクレオチドを用いて、ネオサルトリアヒラツカエを種レベルで特異的に識別同定することができる。具体的には、本領域にポリメラーゼによるDNAの伸長方向であるプライマーの3’末端5塩基以上がハイブリダイズするように設計すればネオサルトリアヒラツカエに特異的なプライマーに用いることが可能であり、それらのプライマーを用いたPCRによる同定が可能となる。また、本領域を10塩基以上ハイブリダイズするように設計したプローブは、ネオサルトリアヒラツカエのβ-チューブリン遺伝子と特異的にハイブリダイズするため、ハイブリダイズの有無によりネオサルトリアヒラツカエを同定することが可能となる。本発明において、前記c及びdのオリゴヌクレオチドを用いて、下記m及び/又はnの塩基配列で表される核酸好ましくは、前記可変部位の存在を確認することが好ましい。m配列番号12に記載のβ-チューブリン遺伝子の部分塩基配列又はその相補配列n配列番号12に記載の塩基配列において1又は数個好ましくは1~25個、より好ましくは1~20個、さらに好ましくは1~15個、特に好ましくは1~10個、最も好ましくは1~5個の塩基が欠失、置換、挿入又は付加されておりかつネオサルトリアヒラツカエの種レベルでの検出に使用できる塩基配列、又はその相補配列ネオサルトリア属真菌の1種である、ネオサルトリアシュードフィシェリのカルモジュリン遺伝子の可変部位を図3及び配列番号13に記載の塩基配列に基づき説明する。なお、配列番号13に記載の塩基配列は、ネオサルトリアシュードフィシェリCBS20892T株のカルモジュリン遺伝子の部分塩基配列を示す。また、図3は、ネオサルトリアシュードフィシェリCBS20892T株及びその他のネオサルトリア属真菌類ネオサルトリアオーストラレンシスCBS11255T株、ネオサルトリアヒラツカエNHL3008T株、ネオサルトリアフェネリアエCBS59874T株、ネオサルトリアグラブラCBS11155T株、ネオサルトリアニシムラエCBS116047株、ネオサルトリアウダガワエCBMFA0702T株、ネオサルトリアコレアナKACC41659T株、ネオサルトリアパウリステンシスCBMFA0690T株、ネオサルトリアラシニオサKACC41657T株、ネオサルトリアスピノサCBS48365T株、ネオサルトリアフィシェリのアナモルフに形態学的に極めて類似したアスペルギルスフミガタスIAM13869extype株、及びネオサルトリアフィシェリCBS54465T株のカルモジュリン遺伝子の部分塩基配列、並びにネオサルトリアシュードフィシェリのカルモジュリン遺伝子の塩基配列における前記e及びfのオリゴヌクレオチドが認識する塩基配列の位置関係を示す。前記eのオリゴヌクレオチド本明細書において、NpfF2ともいう及び前記fのオリゴヌクレオチド本明細書において、NpfR2ともいうはそれぞれ、図3に示すように、配列番号13に記載の塩基配列のうち138位~158位までの領域及び382位~405位までの領域にストリンジェントな条件でハイブリダイズ可能なオリゴヌクレオチドである。これらの領域は種間での塩基配列の保存性が低い可変領域であり、ネオサルトリアシュードフィシェリとその他の種間での塩基配列の保存性が特に低い領域であること、これらの領域の塩基配列はネオサルトリアシュードフィシェリが固有に有する塩基配列であること、を本発明者らが見出した。したがって、前記e及びfのオリゴヌクレオチドを用いて、ネオサルトリアシュードフィシェリを種レベルで特異的に識別同定することができる。具体的には、本領域にポリメラーゼによるDNAの伸長方向であるプライマーの3’末端5塩基以上がハイブリダイズするように設計すればネオサルトリアシュードフィシェリに特異的なプライマーに用いることが可能であり、それらのプライマーを用いたPCRによる同定が可能となる。また、本領域を10塩基以上ハイブリダイズするように設計したプローブは、ネオサルトリアシュードフィシェリのカルモジュリン遺伝子と特異的にハイブリダイズするため、ハイブリダイズの有無によりネオサルトリアシュードフィシェリを同定することが可能となる。本発明において、前記e及びfのオリゴヌクレオチドを用いて、下記o及び/又はpの塩基配列で表される核酸好ましくは、前記可変部位の存在を確認することが好ましい。o配列番号13に記載のカルモジュリン遺伝子の部分塩基配列又はその相補配列p配列番号13に記載の塩基配列において1又は数個好ましくは1~25個、より好ましくは1~20個、さらに好ましくは1~15個、特に好ましくは1~10個、最も好ましくは1~5個の塩基が欠失、置換、挿入又は付加されておりかつネオサルトリアシュードフィシェリの種レベルでの検出に使用できる塩基配列、又はその相補配列ネオサルトリア属真菌の1種である、ネオサルトリアフィシェリのカルモジュリン遺伝子の可変部位を図4及び配列番号14に記載の塩基配列に基づき説明する。なお、配列番号14に記載の塩基配列は、ネオサルトリアフィシェリCBS54465T株のカルモジュリン遺伝子の部分塩基配列を示す。また、図4は、ネオサルトリアフィシェリCBS54465T株及びその他のネオサルトリア属真菌類ネオサルトリアフィシェリのアナモルフに形態学的に極めて類似したアスペルギルスフミガタスIAM13869extype株、ネオサルトリアオーストラレンシスCBS11255T株、ネオサルトリアヒラツカエNHL3008T株、ネオサルトリアフェネリアエCBS59874T株、ネオサルトリアグラブラCBS11155T株、ネオサルトリアニシムラエCBS116047株、ネオサルトリアウダガワエCBMFA0702T株、ネオサルトリアコレアナKACC41659T株、ネオサルトリアパウリステンシスCBMFA0690T株、ネオサルトリアラシニオサKACC41657T株、ネオサルトリアスピノサCBS48365T株、及びネオサルトリアシュードフィシェリCBS20892T株のカルモジュリン遺伝子の部分塩基配列、並びにネオサルトリアフィシェリのカルモジュリン遺伝子の塩基配列における前記g及びhのオリゴヌクレオチドが認識する塩基配列の位置関係を示す。前記gのオリゴヌクレオチド本明細書において、NfiF3ともいう及び前記hのオリゴヌクレオチド本明細書において、NfiR3ともいうはそれぞれ、図4に示すように、配列番号14に記載の塩基配列のうち24位~46位までの領域及び363位~385位までの領域にストリンジェントな条件でハイブリダイズ可能なオリゴヌクレオチドである。これらの領域は種間での塩基配列の保存性が低い可変領域であり、ネオサルトリアフィシェリとその他の種間での塩基配列の保存性が特に低い領域であること、これらの領域の塩基配列はネオサルトリアフィシェリが固有に有する塩基配列であること、を本発明者らが見出した。したがって、前記g及びhのオリゴヌクレオチドを用いて、ネオサルトリアフィシェリを種レベルで特異的に識別同定することができる。具体的には、本領域にポリメラーゼによるDNAの伸長方向であるプライマーの3’末端5塩基以上がハイブリダイズするように設計すればネオサルトリアフィシェリに特異的なプライマーに用いることが可能であり、それらのプライマーを用いたPCRによる同定が可能となる。また、本領域を10塩基以上ハイブリダイズするように設計したプローブは、ネオサルトリアフィシェリのカルモジュリン遺伝子と特異的にハイブリダイズするため、ハイブリダイズの有無によりネオサルトリアフィシェリを同定することが可能となる。本発明において、前記g及びhのオリゴヌクレオチドを用いて、下記q及び/又はrの塩基配列で表される核酸好ましくは、前記可変部位の存在を確認することが好ましい。q配列番号14に記載のカルモジュリン遺伝子の部分塩基配列又はその相補配列r配列番号14に記載の塩基配列において1又は数個好ましくは1~25個、より好ましくは1~20個、さらに好ましくは1~15個、特に好ましくは1~10個、最も好ましくは1~5個の塩基が欠失、置換、挿入又は付加されておりかつネオサルトリアフィシェリの種レベルでの検出に使用できる塩基配列、又はその相補配列ネオサルトリア属真菌の1種である、ネオサルトリアスピノサのカルモジュリン遺伝子の可変部位を図5及び配列番号15に記載の塩基配列に基づき説明する。なお、配列番号15に記載の塩基配列は、ネオサルトリアスピノサCBS48365T株のカルモジュリン遺伝子の部分塩基配列を示す。また、図5は、ネオサルトリアスピノサCBS48365T株、本発明においてネオサルトリアスピノサと同一菌種として扱うネオサルトリアコレアナKACC41659T株、ネオサルトリアラシニオサKACC41657T株及びネオサルトリアパウリステンシスCBMFA0690T株並びにその他のネオサルトリア属真菌類ネオサルトリアアウレオラNeosartoryaaureolaCBS10555T株、ネオサルトリアウダガワエCBMFA0702T株及びネオサルトリアフィシェリCBS54465T株、並びにネオサルトリアフィシェリのアナモルフに形態学的に極めて類似したアスペルギルスフミガタスIAM13869extype株及びその類縁菌アスペルギルスビリジニュータンスAspergillusviridinutansCBS12756T株、アスペルギルスノボフミガタスAspergillusnovofumigatusITB16806T株、アスペルギルスフミシネマタスAspergillusfumisynnematusIFM42277T株、アスペルギルスレンタスAspergilluslentulusFH5T株のカルモジュリン遺伝子の部分塩基配列、並びにネオサルトリアスピノサのカルモジュリン遺伝子の塩基配列における前記i及びjのオリゴヌクレオチドが認識する塩基配列の位置関係を示す。前記iのオリゴヌクレオチド本明細書において、Nspc1Fともいう及び前記jのオリゴヌクレオチド本明細書において、Nspc1Rともいうはそれぞれ、図5に示すように、配列番号15に記載の塩基配列のうち105位~124位までの領域及び336位~355位までの領域にストリンジェントな条件でハイブリダイズ可能なオリゴヌクレオチドである。これらの領域は種間での塩基配列の保存性が低い可変領域であり、ネオサルトリアスピノサとその他の種間での塩基配列の保存性が特に低い領域であること、これらの領域の塩基配列はネオサルトリアスピノサが固有に有する塩基配列であること、を本発明者らが見出した。したがって、前記i及びjのオリゴヌクレオチドを用いて、ネオサルトリアスピノサを種レベルで特異的に識別同定することができる。具体的には、本領域にポリメラーゼによるDNAの伸長方向であるプライマーの3’末端5塩基以上がハイブリダイズするように設計すればネオサルトリアスピノサに特異的なプライマーに用いることが可能であり、それらのプライマーを用いたPCRによる同定が可能となる。また、本領域を10塩基以上ハイブリダイズするように設計したプローブは、ネオサルトリアスピノサのカルモジュリン遺伝子と特異的にハイブリダイズするため、ハイブリダイズの有無によりネネオサルトリアスピノサを同定することが可能となる。本発明において、前記i及びjのオリゴヌクレオチドを用いて、下記s及び/又はtの塩基配列で表される核酸好ましくは、前記可変部位の存在を確認することが好ましい。s配列番号15に記載のカルモジュリン遺伝子の部分塩基配列又はその相補配列t配列番号15に記載の塩基配列において1又は数個好ましくは1~25個、より好ましくは1~20個、さらに好ましくは1~15個、特に好ましくは1~10個、最も好ましくは1~5個の塩基が欠失、置換、挿入又は付加されておりかつネオサルトリアスピノサの種レベルでの検出に使用できる塩基配列、又はその相補配列本発明の検出方法に用いる前記オリゴヌクレオチドa~jは、配列番号1~10のいずれかに記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチドが好ましい。また、本発明の検出方法に用いるオリゴヌクレオチドは、配列番号1~10のいずれかに記載の塩基配列に対して70以上の相同性を有する塩基配列又はその相補配列で表されるオリゴヌクレオチドであってもよく、相同性が80以上であることがさらに好ましく、相同性が85以上であることがさらに好ましく、相同性が90以上であることがさらに好ましく、相同性が95以上であることが特に好ましい。また、本発明で用いることができるオリゴヌクレオチドには、配列番号1~10のいずれかに記載の塩基配列において1又は数個、好ましくは1から5個、より好ましくは1から4個、さらに好ましくは1から3個、よりさらに好ましくは1から2個、特に好ましくは1個の塩基の欠失、置換、挿入又は付加されており、かつネオサルトリア属真菌の種レベルでの検出に使用できるオリゴヌクレオチドも包含される。また、配列番号1~10のいずれかに記載の塩基配列に、適当な塩基配列を付加してもよい。塩基配列の相同性については、LipmanPearson法Science,227,1435,1985等によって計算される。具体的には、遺伝情報処理ソフトウェアGenetyxWinソフトウェア開発製のホモロジー解析Searchhomologyプログラムを用いて、パラメーターであるUnitsizetocomparektupを2として解析を行うことにより算出することができる。前記オリゴヌクレオチドの結合様式は、天然の核酸に存在するホスホジエステル結合だけでなく、例えばホスホロアミデート結合、ホスホロチオエート結合等であってもよい。前記オリゴヌクレオチドは、例えばDNA自動合成機等を用いた化学合成等の通常の合成方法により調製することができる。また、ネオサルトリア属真菌の遺伝子から制限酵素等を用いて直接切り出したり、また遺伝子をクローニングして単離精製した後、制限酵素などを用いて切り出して調製することも可能である。操作の容易さ、大量かつ安価に一定品質のオリゴヌクレオチドを得られる点から化学合成により調製するのが好ましい。前記オリゴヌクレオチド対を用いてネオサルトリア属真菌のβ-チューブリン遺伝子及び/又はカルモジュリン遺伝子の部分塩基配列の存在を確認し、ネオサルトリア属真菌を種レベルで同定する方法として特に制限はなく、シークエンシング法、ハイブリダイゼンション法、PCR法、LAMP法など通常用いられる遺伝子工学的手法で行うことができる。本発明の検出用オリゴヌクレオチドは、核酸プライマー及び核酸プローブとして用いることができる。核酸プローブは、前記オリゴヌクレオチドを標識物によって標識化することで調製することができる。前記標識物としては特に制限されず、放射性物質や酵素、蛍光物質、発光物質、抗原、ハプテン、酵素基質、不溶性担体などの通常の標識物を用いることができる。標識方法は、末端標識でも、配列の途中に標識してもよく、また、糖、リン酸基、塩基部分への標識であってもよい。かかる標識の検出手段としては、例えば核酸プローブが放射性同位元素で標識されている場合にはオートラジオグラフィー等、蛍光物質で標識されている場合には蛍光顕微鏡等、化学発光物質で標識されている場合には感光フィルムを用いた解析やCCDカメラを用いたデジタル解析等が挙げられる。かかる標識の検出手段としては、例えば核酸プローブが放射性同位元素で標識されている場合にはオートラジオグラフィー等、蛍光物質で標識されている場合には蛍光顕微鏡等、化学発光物質で標識されている場合には感光フィルムを用いた解析やCCDカメラを用いたデジタル解析等が挙げられる。このようにして標識化されたオリゴヌクレオチドを、通常の方法により検査対象物から抽出された核酸とストリンジェントな条件下でハイブリダイズさせた後、ハイブリダイズした検出用オリゴヌクレオチドの標識を測定することでネオサルトリア属真菌を検出することができる。核酸とハイブリダイズした核酸プローブの標識を測定する方法としては、通常の方法FISH法、ドットブロット法、サザンブロット法、ノーザンブロット法等を用いることができる。また、前記オリゴヌクレオチドは、固相担体に結合させて捕捉プローブとして用いることもできる。この場合、捕捉プローブと、標識核酸プローブの組み合わせでサンドイッチアッセイを行うこともできるし、標的核酸を標識して捕捉することもできる。本発明の検出方法において、ネオサルトリア属真菌を種レベルで検出するために、前記a及びbのオリゴヌクレオチドからなるオリゴヌクレオチド対、前記c及びdのオリゴヌクレオチドからなるオリゴヌクレオチド対、前記e及びfのオリゴヌクレオチドからなるオリゴヌクレオチド対、前記g及びhのオリゴヌクレオチドからなるオリゴヌクレオチド対、並びに/又は前記i及びjのオリゴヌクレオチドからなるオリゴヌクレオチド対を核酸プローブとして用いたハイブリダイゼーションを行うことが好ましい。ネオサルトリアグラブラを検出するためには、前記a及びbのオリゴヌクレオチドからなるオリゴヌクレオチド対を核酸プローブとして用いるのが好ましい。ネオサルトリアヒラツカエを検出するためには、前記c及びdのオリゴヌクレオチドからなるオリゴヌクレオチド対を核酸プローブとして用いるのが好ましい。ネオサルトリアシュードフィシェリを検出するためには、前記e及びfのオリゴヌクレオチドからなるオリゴヌクレオチド対を核酸プローブとして用いるのが好ましい。ネオサルトリアフィシェリを検出するためには、前記g及びhのオリゴヌクレオチドからなるオリゴヌクレオチド対を核酸プローブとして用いるのが好ましい。ネオサルトリアスピノサを検出するためには、前記i及びjのオリゴヌクレオチドからなるオリゴヌクレオチド対を核酸プローブとして用いるのが好ましい。被検体中のネオサルトリア属真菌を種レベルで検出するためには、前記a及びbのオリゴヌクレオチドからなるオリゴヌクレオチド対、前記c及びdのオリゴヌクレオチドからなるオリゴヌクレオチド対、前記e及びfのオリゴヌクレオチドからなるオリゴヌクレオチド対、前記g及びhのオリゴヌクレオチドからなるオリゴヌクレオチド対並びに前記i及びjのオリゴヌクレオチドからなるオリゴヌクレオチド対からなる群より選ばれる少なくとも1種のオリゴヌクレオチド対を標識化して核酸プローブとし、得られた核酸プローブをDNA又はRNAとハイブリダイズさせ、ハイブリダイズしたプローブの標識を適当な検出法により検出すればよい。上記核酸プローブはネオサルトリア属真菌のβ-チューブリン遺伝子又はカルモジュリン遺伝子の可変部位と特異的にハイブリダイズするので、被検体中のネオサルトリア属真菌を迅速かつ簡便に種レベルで検出することができる。DNA又はRNAとハイブリダイズした核酸プローブの標識を測定する方法としては、通常の方法FISH法、ドットブロット法、サザンブロット法、ノーザンブロット法等を用いることができる。本発明の検出方法において、ネオサルトリア属真菌の検出/同定を行うため、前記少なくとも1種のオリゴヌクレオチド対を用いて、増幅産物の有無を確認することが好ましい。DNA断片を増幅する方法として特に制限はなく、ポリメラーゼ連鎖反応PCR法、LCRLigaseChainReaction法、SDAStrandDisplacementAmplification法、NASBANucleicAcidSequencebasedAmplification法、RCARollingcircleamplification法、LAMPLoopmediatedisothermalamplification法など通常の方法を用いることができる。本発明においては、PCR法を用いるのが好ましい。本発明において、PCR法により増幅反応を行いネオサルトリア属真菌の検出を行う場合について詳しく説明する。本発明において、ネオサルトリアグラブラを検出するためには、前記a及びbのオリゴヌクレオチド好ましくは、配列番号1に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド及び配列番号2に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチドをそれぞれ核酸プライマーとして用いてPCR法を行い、ネオサルトリアグラブラのβ-チューブリン遺伝子の部分塩基配列好ましくは、前記k又はlの塩基配列の一部を増幅し、増幅産物の有無を確認するのが好ましい。また、前記a及びbのオリゴヌクレオチドからなるオリゴヌクレオチド対をネオサルトリア属真菌具体的には、ネオサルトリアグラブラ検出用オリゴヌクレオチド対とすることができる。本発明において、ネオサルトリアヒラツカエを検出するためには、前記c及びdのオリゴヌクレオチド好ましくは、配列番号3に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド及び配列番号4に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチドをそれぞれ核酸プライマーとして用いてPCR法を行い、ネオサルトリアヒラツカエのβ-チューブリン遺伝子の部分塩基配列好ましくは、前記m又はnの塩基配列の一部を増幅し、増幅産物の有無を確認するのが好ましい。また、前記c及びdのオリゴヌクレオチドからなるオリゴヌクレオチド対をネオサルトリア属真菌具体的には、ネオサルトリアヒラツカエ検出用オリゴヌクレオチド対とすることができる。本発明において、ネオサルトリアシュードフィシェリを検出するためには、前記e及びfのオリゴヌクレオチド好ましくは、配列番号5に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド及び配列番号6に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチドをそれぞれ核酸プライマーとして用いてPCR法を行い、ネオサルトリアシュードフィシェリのカルモジュリン遺伝子の部分塩基配列好ましくは、前記o又はpの塩基配列の一部を増幅し、増幅産物の有無を確認するのが好ましい。前記e及びfのオリゴヌクレオチドからなるオリゴヌクレオチド対をネオサルトリア属真菌具体的には、ネオサルトリアシュードフィシェリ検出用オリゴヌクレオチド対とすることができる。本発明において、ネオサルトリアフィシェリを検出するためには、前記g及びhのオリゴヌクレオチド好ましくは、配列番号7に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド及び配列番号8に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチドをそれぞれ核酸プライマーとして用いてPCR法を行い、ネオサルトリアフィシェリのカルモジュリン遺伝子の部分塩基配列好ましくは、前記q又はrの塩基配列の一部を増幅し、増幅産物の有無を確認するのが好ましい。前記g及びhのオリゴヌクレオチドからなるオリゴヌクレオチド対をネオサルトリア属真菌具体的には、ネオサルトリアフィシェリ検出用オリゴヌクレオチド対とすることができる。本発明において、ネオサルトリアスピノサを検出するためには、前記i及びjのオリゴヌクレオチド好ましくは、配列番号9に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド及び配列番号10に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチドをそれぞれ核酸プライマーとして用いてPCR法を行い、ネオサルトリアスピノサのカルモジュリン遺伝子の部分塩基配列好ましくは、前記s又はtの塩基配列の一部を増幅し、増幅産物の有無を確認するのが好ましい。前記i及びjのオリゴヌクレオチドからなるオリゴヌクレオチド対をネオサルトリア属真菌具体的には、ネオサルトリアスピノサ検出用オリゴヌクレオチド対とすることができる。PCRの条件は、目的のDNA断片を検出可能な程度に増幅することができれば特に制限されない。例えば、前記a及びbのオリゴヌクレオチドを核酸プライマーとして用いてPCR法を行う場合、2本鎖DNAを1本鎖にする熱変性反応を95~98°Cで約5~60秒間行い、プライマー対を1本鎖DNAにハイブリダイズさせるアニーリング反応を57~63°Cで約5~60秒間行い、DNAポリメラーゼを作用させる伸長反応を約72°Cで約10~120秒間行い、これらを1サイクルとしたものを約30~35サイクル行う。また、前記c及びdのオリゴヌクレオチドを核酸プライマーとして用いてPCR法を行う場合、2本鎖DNAを1本鎖にする熱変性反応を95~98°Cで約5~60秒間行い、プライマー対を1本鎖DNAにハイブリダイズさせるアニーリング反応を56~63°Cで約5~60秒間行い、DNAポリメラーゼを作用させる伸長反応を約72°Cで約10~60秒間行い、これらを1サイクルとしたものを約30~35サイクル行う。また、前記e及びfのオリゴヌクレオチド対を核酸プライマーとして用いてPCR法を行う場合、2本鎖DNAを1本鎖にする熱変性反応を95~98°Cで約5~60秒間行い、プライマー対を1本鎖DNAにハイブリダイズさせるアニーリング反応を57~63°Cで約5~60秒間行い、DNAポリメラーゼを作用させる伸長反応を約72°Cで約10~60秒間行い、これらを1サイクルとしたものを約30~35サイクル行う。また、前記g及びhのオリゴヌクレオチド対を核酸プライマーとして用いてPCR法を行う場合、2本鎖DNAを1本鎖にする熱変性反応を95~98°Cで約5~60秒間行い、プライマー対を1本鎖DNAにハイブリダイズさせるアニーリング反応を57~63°Cで約5~60秒間行い、DNAポリメラーゼを作用させる伸長反応を約72°Cで約10~60秒間行い、これらを1サイクルとしたものを約30~35サイクル行う。また、前記i及びjオリゴヌクレオチド対を核酸プライマーとして用いてPCR法を行う場合、2本鎖DNAを1本鎖にする熱変性反応を95~98°Cで約5~60秒間行い、プライマー対を1本鎖DNAにハイブリダイズさせるアニーリング反応を55~61°Cで約5~60秒間行い、DNAポリメラーゼを作用させる伸長反応を約72°Cで約10~60秒間行い、これらを1サイクルとしたものを約30~35サイクル行う。本発明において、遺伝子断片の確認は通常の方法で行うことができる。例えば増幅産物について電気泳動を行い増幅した遺伝子の大きさに対応するバンドの有無を確認する方法、増幅産物量を経時的に計測する方法、増幅産物の塩基配列を解読する方法等が挙げられるが、本発明はこれらの方法に限定されるものではない。本発明においては、遺伝子増幅処理後に電気泳動を行い、増幅した遺伝子の大きさに対応するバンドの有無を確認する方法が好ましい。また、本発明において、増幅産物の検出は通常の方法で行うことができる。例えば増幅反応時に放射性物質などで標識されたヌクレオチドを取り込ませる方法、蛍光物質などで標識されたプライマーを用いる方法、増幅したDNA2本鎖の間にエチジウムブロマイドなどのDNAと結合することにより蛍光強度が強くなる蛍光物質を入り込まさせる方法等が挙げられるが、本発明はこれらの方法に限定されるものではない。本発明においては、増幅したDNA2本鎖の間にDNAと結合することにより蛍光強度が強くなる蛍光物質を入り込ませる方法が好ましい。検体に検出対象真菌が含まれる場合、本発明のオリゴヌクレオチド対をプライマーセットとして使用してPCRを行い、得られたPCR産物について電気泳動を行うと、特定のサイズでDNA断片が確認される。具体的には、検体にネオサルトリアグラブラが含まれる場合、前記a及びbのオリゴヌクレオチドを核酸プライマーとして用いて得られたPCR産物の電気泳動を行うと、約250bpのサイズでDNA断片が確認される。検体にネオサルトリアヒラツカエが含まれる場合、前記c及びdのオリゴヌクレオチドを核酸プライマーとして用いて得られたPCR産物の電気泳動を行うと、約300bpのサイズでDNA断片が確認される。検体にネオサルトリアシュードフィシェリが含まれる場合、前記e及びfのオリゴヌクレオチド対を核酸プライマーとして用いて得られたPCR産物の電気泳動を行うと、約250bpのサイズでDNA断片が確認される。検体にネオサルトリアフィシェリが含まれる場合、前記g及びhのオリゴヌクレオチド対を核酸プライマーとして用いて得られたPCR産物の電気泳動を行うと、約350bpのサイズでDNA断片が確認される。検体にネオサルトリアスピノサが含まれる場合、前記i及びjのオリゴヌクレオチド対を核酸プライマーとして用いて得られたPCR産物の電気泳動を行うと、約250bpのサイズでDNA断片が確認される。このような操作を行うことにより、検体に検出対象真菌が含まれているかを確認することができる。本発明において、ネオサルトリア属真菌の同定を行うために、前記オリゴヌクレオチド対を用いて被検体のβ-チューブリン遺伝子又はカルモジュリン遺伝子の部分塩基配列を決定し、該遺伝子の部分塩基配列が前記k~tのいずれかの塩基配列に含まれるか否かを確認することで、前記k~tのいずれかの塩基配列で表される核酸の存在を確認しネオサルトリア属真菌を種レベルで検出することもできる。すなわち、本発明の検出方法は、被検体の有するβ-チューブリン遺伝子又はカルモジュリン遺伝子の部分塩基配列を解析決定し、決定した塩基配列と前記k~tのいずれかの塩基配列とを比較し、その一致又は相違に基づいて前記k~tのいずれかの塩基配列で表される核酸の存在を確認しネオサルトリア属真菌の種レベルの同定を行うものである。例えば、前記a及びbのオリゴヌクレオチドからなるオリゴヌクレオチド対、前記c及びdのオリゴヌクレオチドからなるオリゴヌクレオチド対、前記e及びfのオリゴヌクレオチドからなるオリゴヌクレオチド対、前記g及びhのオリゴヌクレオチドからなるオリゴヌクレオチド対、並びに前記i及びjのオリゴヌクレオチドからなるオリゴヌクレオチド対からなる群より選ばれる少なくとも1種のオリゴヌクレオチド対をプライマーとして用いてPCRを行い、得られる増幅産物の塩基配列と前記k~tのいずれかの塩基配列とを比較する。増幅産物の塩基配列が、前記k又はlの塩基配列で表される核酸の一部として含まれていれば検体に含まれる微生物をネオサルトリアグラブラと同定することができ、前記m又はnの塩基配列で表される核酸の一部として含まれていれば検体に含まれる微生物をネオサルトリアヒラツカエと同定することができ、前記o又はpの塩基配列で表される核酸の一部として含まれていれば検体に含まれる微生物をネオサルトリアシュードフィシェリと同定することができ、前記q又はrの塩基配列で表される核酸の一部として含まれていれば検体に含まれる微生物をネオサルトリアフィシェリと同定することができ、前記s又はtの塩基配列で表される核酸の一部として含まれていれば検体に含まれる微生物をネオサルトリアスピノサと同定することができる。塩基配列を解析決定する方法としては特に限定されず、通常行われているRNA又はDNAシークエンシングの手法を用いることができる。具体的には、マクサム-ギルバート法、サンガー法等の電気泳動法、質量分析法、ハイブリダイゼーション法等が挙げられる。サンガー法においては、放射線標識法、蛍光標識法等により、プライマー又は、ターミネーターを標識する方法が挙げられる。本発明において、増幅反応に用いられるプライマーは、設計した配列を基にして化学合成したり、試薬メーカーから購入することができる。具体的には、オリゴヌクレオチド合成装置等を用いて合成することができる。また、合成後、吸着カラム、高速液体クロマトグラフィーや電気泳動法を用いて精製したものを用いることもできる。また、1ないし数個の塩基が置換、欠失、挿入若しくは付加された塩基配列を有するオリゴヌクレオチドについても、通常の方法を使用して合成できる。本発明において使用される検体としては特に制限はなく、飲食品自体、飲食品の原材料、単離菌体、培養菌体等を用いることができる。検体からDNAを調製する方法としては、ネオサルトリア属真菌の検出を行うのに十分な精製度及び量のDNAが得られるのであれば特に制限されず、未精製の状態でも使用できるが、さらに分離、抽出、濃縮、精製等の前処理をして使用することもできる。例えば、フェノール及びクロロホルム抽出を行って精製したり、市販の抽出キットを用いて精製して、核酸の純度を高めて使用することができる。また、被検体中のRNAを逆転写して得られるDNAを用いることもできる。本発明のネオサルトリア属真菌検出用キットは、前記本発明の検出用オリゴヌクレオチド又は検出用オリゴヌクレオチド対を核酸プローブ又は核酸プライマーとして含有するものである。本発明のキットは、前記核酸プローブ又は核酸プライマーの他に、目的に応じ、標識検出物質、緩衝液、核酸合成酵素DNAポリメラーゼ、RNAポリメラーゼ、逆転写酵素等、酵素基質dNTP,rNTP等等、菌類の検出に通常用いられる物質を含有する。本発明のキットには、本発明の検出用オリゴヌクレオチド又は検出用オリゴヌクレオチド対によって検出反応が可能であることを確認するための陽性対照ポジティブコントロールを含んでいてもよい。陽性対照としては、例えば、本発明の方法により増幅される領域を含んだDNAが挙げられる。以下、本発明を実施例に基づきさらに詳細に説明するが、本発明はこれに限定されるものではない。1ネオサルトリア属真菌に特異的なβ-チューブリン遺伝子の部分塩基配列の解析下記の方法により、ネオサルトリア属に属する真菌各種ネオサルトリアグラブラ、ネオサルトリアニシムラエ、ネオサルトリアオーストラレンシス、ネオサルトリアフェネリアエ、ネオサルトリアヒラツカエ、ネオサルトリアウダガワエ、ネオサルトリアコレアナ、ネオサルトリアパウリステンシス、ネオサルトリアラシニオサ、ネオサルトリアスピノサ、ネオサルトリアフィシェリ及びネオサルトリアシュードフィシェリ及びネオサルトリアフィシェリのアナモルフであるアスペルギルスフミガタスのβ-チューブリン遺伝子の塩基配列を決定した。PDAポテトデキストロース寒天斜面培地にて30°Cで7日間暗所培養した菌体から、GenとるくんTMタカラバイオ社製を使用し、DNAを抽出した。目的とする部位のPCR増幅は、PuReTaqTMReadyToGoPCRBeadsGEHealthCareUKLTDを用いて、プライマーとしてBt2a5’GGTAACCAAATCGGTGCTGCTTTC3’:配列番号16、Bt2b5’ACCCTCAGTGTAGTGACCCTTGGC3’:配列番号17GlassandDonaldson,Appl,Environ,Microbiol,61,p.1323-1330,1995参照を使用した。増幅条件は、変性温度95°C、アニーリング温度59°C、伸長温度72°C、35サイクルで実施した。PCR産物は、AutoSegTMG50AmershamPharmaciaBiotech社製を使用し精製した。PCR産物は、BigDyeterminatorVer.31商品名、AppliedBiosystems社製を使用してラベル化し、ABIPRISM3130GeneticAnalyzerAppliedBiosystems社製で電気泳動を実施した。電気泳動時の蛍光シグナルからの塩基配列の決定には、ソフトウエアー‘ATGCVer.4’Genetyx社製を使用した。シークエンシング法により決定したネオサルトリア属真菌各種や、各種菌類の公知のβ-チューブリン遺伝子の塩基配列情報をもとに、ClustalWhttpclustalwddbjnigacjptopjhtmlを用いてアライメント解析を行い、ネオサルトリアグラブラ及びネオサルトリアヒラツカエにそれぞれ特異的な塩基配列を含有するβ-チューブリン遺伝子の中の特定部位を決定した。2ネオサルトリア属真菌に特異的なカルモジュリン遺伝子の部分塩基配列の解析下記の方法により、ネオサルトリア属に属する真菌各種ネオサルトリアグラブラ、ネオサルトリアニシムラエ、ネオサルトリアオーストラレンシス、ネオサルトリアフェネリアエ、ネオサルトリアヒラツカエ、ネオサルトリアウダガワエ、ネオサルトリアコレアナ、ネオサルトリアパウリステンシス、ネオサルトリアラシニオサ、ネオサルトリアスピノサ、ネオサルトリアフィシェリ及びネオサルトリアシュードフィシェリ並びにネオサルトリアフィシェリのアナモルフであるアスペルギルスフミガタス及びその類縁菌のカルモジュリン遺伝子の塩基配列を決定した。PDAポテトデキストロース寒天斜面培地にて30°Cで3~5日間暗所培養した菌体から、GenとるくんTMタカラバイオ社製を使用し、DNAを抽出した。目的とする部位のPCR増幅は、PuReTaqTMReadyToGoPCRBeadsGEHealthCareUKLTDを用いて、プライマーとしてcmd55’CCGAGTACAAGGAGGCCTTC3’:配列番号18、cmd65’CCGATAGAGGTCATAACGTGG3’:配列番号19を使用した。増幅条件は、変性温度95°C、アニーリング温度55°C、伸長温度72°C、35サイクルで実施した。PCR産物は、AutoSegTMG50AmershamPharmaciaBiotechを使用し精製した。PCR産物は、BigDyeterminatorVer.31商品名、AppliedBiosystems社製を使用してラベル化し、ABIPRISM3130GeneticAnalyzerAppliedBiosystems社製で電気泳動を実施した。電気泳動時の蛍光シグナルからの塩基配列の決定には、ソフトウエアー‘ATGCVer.4’Genetyx社製を使用した。シークエンシング法により決定したネオサルトリア属真菌各種や、各種菌類の公知のカルモジュリン遺伝子の塩基配列情報をもとに、ClustalWhttpclustalwddbjnigacjptopjhtmlを用いてアライメント解析を行い、ネオサルトリアシュードフィシェリ、ネオサルトリアフィシェリ及びネオサルトリアスピノサにそれぞれ特異的な塩基配列を含有するカルモジュリン遺伝子の中の特定部位を決定した。3プライマーの設計上記で決定したネオサルトリア属真菌各種に特異的な塩基配列部位をもとに、配列番号1の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチドからなるプライマーNglF1プライマー、配列番号2の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチドからなるプライマーNglR1プライマー、配列番号3の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチドからなるプライマーNhiF1プライマー、配列番号4の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチドからなるプライマーNhiR1プライマー、配列番号5の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチドからなるプライマーNpfF2プライマー、配列番号6の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチドからなるプライマーNpfR2プライマー、配列番号7の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチドからなるプライマーNfiF3プライマー、配列番号8の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチドからなるプライマーNfiR3プライマー、配列番号9の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチドからなるプライマーNspc1Fプライマー、及び配列番号10の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチドからなるプライマーNspc1Rプライマーを設計し、シグマアルドリッチジャパン社に合成依頼し脱塩精製品、0.02μmolスケール、購入した。前記の各プライマーは、図1~5に示すように、ネオサルトリアグラブラ及びネオサルトリアヒラツカエのβ-チューブリン遺伝子の各特定領域並びにネオサルトリアシュードフィシェリ、ネオサルトリアフィシェリ及びネオサルトリアスピノサのカルモジュリン遺伝子の各特定領域の塩基配列に基づき設計したものである。4ネオサルトリアグラブラの検出設計したNglF1プライマー及びNglR1プライマーの有効性の評価に用いる真菌類、すなわちネオサルトリアグラブラとその他の真菌類としては、表2に記載した菌株を使用した。これらの菌株に関しては、千葉大学医学部真菌医学研究センターが保管し管理ナンバーにより管理されている株、TheCentraalbureauvoorSchimmelculturesが保管しCBSナンバーにより管理されている株、及び財団法人発酵研究所が管理しIFOナンバーで管理されている株等を入手し、使用した。各菌株を至適条件下で培養した。培養条件についてはポテトデキストロース培地商品名:パールコアポテトデキストロース寒天培地、栄研化学株式会社製を用いて25~30°Cで3~5日間培養した。培養した各菌体を白金耳を用いて回収し、ゲノムDNA調製用キットアプライドバイオシステムズ社製PrepManultra商品名を用いて、ゲノムDNA溶液を調製した。DNA溶液の濃度は5ng/μLに調製した。DNAテンプレートとして上記で調製したゲノムDNA溶液1μL、PreMixTaq商品名、タカラバイオ社製13μL及び無菌蒸留水10μLを混合し、NglF1プライマー20pmol/μL0.5μL及びNglR1プライマー20pmol/μL0.5μLを加え、25μLのPCR溶液を調製した。PCR溶液について、自動遺伝子増幅装置サーマルサイクラーDICEタカラバイオを用いて遺伝子増幅処理を行った。PCR条件は、98°C、5秒間の熱変性反応、61°C、5秒間のアニーリング反応、及び72°C、10秒間の伸長反応を1サイクルとしたものを35サイクル行った。PCR後、PCR溶液から2μLを分取してローディングバッファーと十分に混和し、2アガロースゲルを用いて電気泳動135V、25分間を行った。電気泳動終了後、アガロースゲルをSYBRSafeDNAgelstainin1×TAEインビトロジェンでDNAを染色後、増幅されたDNA断片の有無を確認した。その結果を図6に示す。図中の番号は表記載の対応する試料番号の試料から抽出したDNAを用いて反応を行ったサンプルであることを示している。なお、分子量マーカーとして、EZLoadTM100bpMolecularRuler商品名、BIORAD社製を用いた。その結果、ネオサルトリアグラブラのゲノムDNAを含む試料では、約250bpのサイズで遺伝子断片が確認された。一方、ネオサルトリアグラブラ以外の真菌のゲノムDNAを含む試料では、遺伝子断片は確認されなかった。したがって、特定のオリゴヌクレオチド対を用いることによって、ネオサルトリアグラブラを特異的に検出し、種レベルで同定することができる。5ネオサルトリアヒラツカエの検出設計したNhiF1プライマー及びNhiR1プライマーの有効性の評価に用いる真菌類、すなわちネオサルトリアヒラツカエとその他の真菌類としては、表3に記載した菌株を使用した。これらの菌株に関しては、独立行政法人製品評価技術基盤機構が保管しNBRCナンバーにより管理されている株、千葉大学医学部真菌医学研究センターが保管しIFMナンバーにより管理されている株、TheCentraalbureauvoorSchimmelculturesが保管しCBSナンバーにより管理されている株、及び財団法人発酵研究所が管理しIFOナンバーで管理されている株等を入手し、使用した。各菌株を至適条件下で培養した。培養条件についてはポテトデキストロース培地商品名:パールコアポテトデキストロース寒天培地、栄研化学株式会社製を用いて25~30°Cで3~5日間培養した。培養した各菌体を白金耳を用いて回収し、ゲノムDNA調製用キットアプライドバイオシステムズ社製PrepManultra商品名を用いて、ゲノムDNA溶液を調製した。DNA溶液の濃度は5ng/μLに調製した。DNAテンプレートとして上記で調製したゲノムDNA溶液1μL、PreMixTaq商品名、タカラバイオ社製13μL及び無菌蒸留水10μLを混合し、NhiF1プライマー20pmol/μL0.5μL及びNhiR1プライマー20pmol/μL0.5μLを加え、25μLのPCR溶液を調製した。PCR溶液について、自動遺伝子増幅装置サーマルサイクラーDICEタカラバイオを用いて遺伝子増幅処理を行った。PCR条件は、98°C、5秒間の熱変性反応、61°C、5秒間のアニーリング反応、及び72°C、10秒間の伸長反応を1サイクルとしたものを30サイクル行った。PCR後、PCR溶液から2μLを分取してローディングバッファーと十分に混和し、2アガロースゲルを用いて電気泳動135V、25分間を行った。電気泳動終了後、アガロースゲルをSYBRSafeDNAgelstainin1×TAEインビトロジェンでDNAを染色後、増幅されたDNA断片の有無を確認した。その結果を図7に示す。図中の番号は表記載の対応する試料番号の試料から抽出したDNAを用いて反応を行ったサンプルであることを示している。なお、分子量マーカーとして、EZLoadTM100bpMolecularRuler商品名、BIORAD社製を用いた。その結果、ネオサルトリアヒラツカエのゲノムDNAを含む試料では、約300bpのサイズで遺伝子断片が確認された。一方、ネオサルトリアヒラツカエ以外の真菌のゲノムDNAを含む試料では、遺伝子断片は確認されなかった。したがって、特定のオリゴヌクレオチド対を用いることによって、ネオサルトリアヒラツカエを特異的に検出し、種レベルで同定することができる。6ネオサルトリアシュードフィシェリの検出設計したNpfF2プライマー及びNpfR2プライマーの有効性の評価に用いる真菌類、すなわちネオサルトリアシュードフィシェリとその他の真菌類としては、前記表3に記載した菌株を使用した。各菌株を至適条件下で培養した。培養条件についてはポテトデキストロース培地商品名:パールコアポテトデキストロース寒天培地、栄研化学株式会社製を用いて25~30°Cで3~5日間培養した。培養した各菌体を白金耳を用いて回収し、ゲノムDNA調製用キットアプライドバイオシステムズ社製PrepManultra商品名を用いて、ゲノムDNA溶液を調製した。DNA溶液の濃度は5ng/μLに調製した。DNAテンプレートとして上記で調製したゲノムDNA溶液1μL、PreMixTaq商品名、タカラバイオ社製13μL及び無菌蒸留水10μLを混合し、NpfF2プライマー20pmol/μL0.5μL及びNpfR2プライマー20pmol/μL0.5μLを加え、25μLのPCR溶液を調製した。PCR溶液について、自動遺伝子増幅装置サーマルサイクラーDICEタカラバイオを用いて遺伝子増幅処理を行った。PCR条件は、98°C、5秒間の熱変性反応、61°C、5秒間のアニーリング反応、及び72°C、10秒間の伸長反応を1サイクルとしたものを35サイクル行った。PCR後、PCR溶液から2μLを分取してローディングバッファーと十分に混和し、2アガロースゲルを用いて電気泳動135V、25分間を行った。電気泳動終了後、アガロースゲルをSYBRSafeDNAgelstainin1×TAEインビトロジェンでDNAを染色後、増幅されたDNA断片の有無を確認した。その結果を図8に示す。図中の番号は表記載の対応する試料番号の試料から抽出したDNAを用いて反応を行ったサンプルであることを示している。なお、分子量マーカーとして、EZLoadTM100bpMolecularRuler商品名、BIORAD社製を用いた。その結果、ネオサルトリアシュードフィシェリのゲノムDNAを含む試料では、約250bpのサイズで遺伝子断片が確認された。一方、ネオサルトリアシュードフィシェリ以外の真菌のゲノムDNAを含む試料では、遺伝子断片は確認されなかった。したがって、特定のオリゴヌクレオチド対を用いることによって、ネオサルトリアシュードフィシェリを特異的に検出し、種レベルで同定することができる。7ネオサルトリアフィシェリの検出設計したNfiF3プライマー及びNfiR3プライマーの有効性の評価に用いる真菌類、すなわちネオサルトリアシュードフィシェリとその他の真菌類としては、前記表2に記載した菌株を使用した。各菌株を至適条件下で培養した。培養条件についてはポテトデキストロース培地商品名:パールコアポテトデキストロース寒天培地、栄研化学株式会社製を用いて25~30°Cで3~5日間培養した。培養した各菌体を白金耳を用いて回収し、ゲノムDNA調製用キットアプライドバイオシステムズ社製PrepManultra商品名を用いて、ゲノムDNA溶液を調製した。DNA溶液の濃度は5ng/μLに調製した。DNAテンプレートとして上記で調製したゲノムDNA溶液1μL、PreMixTaq商品名、タカラバイオ社製13μL及び無菌蒸留水10μLを混合し、NfiF3プライマー20pmol/μL0.5μL及びNfiR3プライマー20pmol/μL0.5μLを加え、25μLのPCR溶液を調製した。PCR溶液について、自動遺伝子増幅装置サーマルサイクラーDICEタカラバイオを用いて遺伝子増幅処理を行った。PCR条件は、98°C、5秒間の熱変性反応、61°C、5秒間のアニーリング反応、及び72°C、10秒間の伸長反応を1サイクルとしたものを35サイクル行った。PCR後、PCR溶液から2μLを分取してローディングバッファーと十分に混和し、2アガロースゲルを用いて電気泳動135V、25分間を行った。電気泳動終了後、アガロースゲルをSYBRSafeDNAgelstainin1×TAEインビトロジェンでDNAを染色後、増幅されたDNA断片の有無を確認した。その結果を図9に示す。図中の番号は表記載の対応する試料番号の試料から抽出したDNAを用いて反応を行ったサンプルであることを示している。なお、分子量マーカーとして、EZLoadTM100bpMolecularRuler商品名、BIORAD社製を用いた。その結果、ネオサルトリアフィシェリのゲノムDNAを含む試料では、約350bpのサイズで遺伝子断片が確認された。一方、ネオサルトリアフィシェリ以外の真菌のゲノムDNAを含む試料では、遺伝子断片は確認されなかった。したがって、特定のオリゴヌクレオチド対を用いることによって、ネオサルトリアフィシェリを特異的に検出し、種レベルで同定することができる。8ネオサルトリアスピノサの検出設計したNspc1Fプライマー及びNspc1Rプライマーの有効性の評価に用いる真菌類、すなわちネオサルトリアスピノサネオサルトリアコレアナ、ネオサルトリアラシニオサ及びネオサルトリアパウリステンシスを含むとその他の真菌類としては、表4~6に記載した菌株を使用した。これらの菌株に関しては、千葉大学医学部真菌医学研究センターが保管し管理ナンバーにより管理されている株、TheCentraalbureauvoorSchimmelculturesが保管しCBSナンバーにより管理されている株、及び財団法人発酵研究所が管理しIFOナンバーで管理されている株等を入手し、使用した。各菌株を至適条件下で培養した。培養条件についてはポテトデキストロース培地商品名:パールコアポテトデキストロース寒天培地、栄研化学株式会社製を用いて25~30°Cで3~5日間培養した。培養した各菌体を白金耳を用いて回収し、ゲノムDNA調製用キットアプライドバイオシステムズ社製PrepManultra商品名を用いて、ゲノムDNA溶液を調製した。DNA溶液の濃度は5ng/μLに調製した。DNAテンプレートとして上記で調製したゲノムDNA溶液1μL、PreMixTaq商品名、タカラバイオ社製13μL及び無菌蒸留水10μLを混合し、Nspc1Fプライマー20pmol/μL0.5μL及びNglR1プライマー20pmol/μL0.5μLを加え、25μLのPCR溶液を調製した。PCR溶液について、自動遺伝子増幅装置サーマルサイクラーDICEタカラバイオを用いて遺伝子増幅処理を行った。PCR条件は、97°C、1分間の熱変性反応、60°C、1分間のアニーリング反応、及び72°C、1分間の伸長反応を1サイクルとしたものを35サイクル行った。PCR後、PCR溶液から2μLを分取してローディングバッファーと十分に混和し、2アガロースゲルを用いて電気泳動135V、25分間を行った。電気泳動終了後、アガロースゲルをSYBRSafeDNAgelstainin1×TAEインビトロジェンでDNAを染色後、増幅されたDNA断片の有無を確認した。その結果を図10~12に示す。なお、図10は表4に示す菌類の試料についての電気泳動図を示し、図11は表5に示す菌類の試料についての電気泳動図を示し、図12は表6に示す菌類の試料についての電気泳動図を示す。図中の番号は表記載の対応する試料番号の試料から抽出したDNAを用いて反応を行ったサンプルであることを示している。なお、分子量マーカーとして、EZLoadTM100bpMolecularRuler商品名、BIORAD社製を用いた。その結果、ネオサルトリアスピノサ、ネオサルトリアコレアナ、ネオサルトリアラシニオサ又はネオサルトリアパウリステンシスのゲノムDNAを含む試料では、約250bpのサイズで遺伝子断片が確認された。一方、ネオサルトリアスピノサ以外の真菌のゲノムDNAを含む試料では、遺伝子断片は確認されなかった。したがって、特定のオリゴヌクレオチド対を用いることによって、ネオサルトリアスピノサネオサルトリアコレアナ、ネオサルトリアラシニオサ及びネオサルトリアパウリステンシスを含むを特異的に検出し、種レベルで同定することができる。上記の結果から、本発明のオリゴヌクレオチドを用いることによって、ネオサルトリア属真菌のβ-チューブリン遺伝子又はカルモジュリン遺伝子の部分塩基配列の存在を確認することができ、ネオサルトリア属真菌を種レベルで特異的に検出できることがわかる。したがって、本発明の方法によれば、種レベルで簡便、迅速かつ特異的にネオサルトリア属真菌を検出することが可能である。"