メラノイジンを有効成分とする、血管新生阻害剤。前記メラノイジンが、乳酸菌と酵母とを共棲発酵してなる発酵エキスからの抽出物であることを特徴とする、請求項1記載の血管新生阻害剤。前記メラノイジンが、多糖類と、野菜果物と、海藻とを、前記共棲発酵したものであることを特徴とする、請求項2記載の血管新生阻害剤。前記野菜果物が、パパイヤである、請求項3記載の血管新生阻害剤。前記多糖類が、米、米糠および/または玄米であることを特徴とする、請求項3または4記載の血管新生阻害剤。前記したように悪性腫瘍や糖尿病性網膜症などは、その進行に伴い血管が新生され、血管新生が病態悪化の一因となっている。したがって、血管新生を阻害しうる薬剤は、このような疾患の治療剤として使用されるのみならず予防剤としても有効である。また、血管新生阻害剤が使用される疾患は、糖尿病性網膜症、血管新生緑内障、炎症性皮膚疾患、関節炎リウマチ、変形性関節症、粥状動脈硬化症、心筋梗塞等の閉塞性疾患等など長期に亘る慢性疾患が多い。上記特許文献1記載の血管新生抑制剤はイチョウ葉抽出物を使用するものであるが、イチョウ葉は食品ではない。また、特許文献2~4に記載される化合物もそれ自体が食品ではない。よって、血管新生によって疾患が悪化する悪性腫瘍や糖尿病性網膜症などの予防にも使用しうる、食品由来の新規な血管新生阻害剤の開発が望まれる。一方、メラノイジンは、還元糖とアミノ化合物とのメイラード反応物であり、味噌や醤油などの発酵工程でも産生される発酵産物である。上記特許文献6に示すように発酵産物から得たメラノイジンに抗酸化作用が期待され、特許文献7に示すように糖質とアミノ酸との加熱で生成したメラノイジンにインターロイキン-12産生促進作用が期待されている。しかしながら、メラノイジンによる血管新生抑制効果については全く知られていない。上記現状に鑑み、本発明は食品を原料として生成されるメラノイジンを有効成分とする血管新生阻害剤を提供することを目的とする。本発明者らは、メラノイジンの効果について詳細に検討したところ、酵母と乳酸菌との共棲発酵産物から抽出されるメラノイジンに血管新生阻害作用があることを見出し、本発明を完成させた。乳酸菌と酵母との共棲発酵により、加熱することなく、褐色のメラノイジンが産生されることは知られておらず、このようなメラノイジンが優れた血管新生阻害作用も全く知られていない。すなわち本発明は、メラノイジンを有効成分とする、血管新生阻害剤を提供するものである。また本発明は、前記メラノイジンが、乳酸菌と酵母とを共棲発酵してなる発酵エキスからの抽出物であることを特徴とする、上記血管新生阻害剤を提供するものである。また本発明は、前記メラノイジンが、多糖類と、野菜果物と、海藻とを、前記共棲発酵したものであることを特徴とする、上記血管新生阻害剤を提供するものである。また本発明は、前記野菜果物が、パパイヤである、上記血管新生阻害剤を提供するものである。また本発明は、前記多糖類が、米、米糠および/または玄米であることを特徴とする、上記血管新生阻害剤を提供するものである。本発明によれば、メラノイジンを有効成分とする血管新生阻害剤が提供される。本発明は、メラノイジンを有効成分とする、血管新生阻害剤である。メラノイジンは、糖質とアミノ化合物との反応産物の総称であるから、糖質やアミノ化合物の種類が異なればメラノイジンも異なる。また、発酵は、有用微生物の作用によって有機化合物を加工する工程であるから、使用する微生物が異なれば、更にさまざまなメラノイジンが生産される。本発明によれば、少なくとも乳酸菌と酵母との共棲発酵によって生成されるメラノイジンは、血管新生阻害作用を有する。本発明で使用するメラノイジンは、乳酸菌と酵母とを共棲発酵してなる発酵エキスからの抽出物である。少なくとも乳酸菌と酵母とを使用することで、メラノイジンを生成することができる。乳酸菌は、糖質から乳酸を生成するが、発酵液中に生成した乳酸によって培養液に含まれるタンパク質がペプチドやアミノ酸に分解される。また、アミラーゼ活性を有する乳酸菌は、米や玄米に含まれるアミラーゼを単糖に分解することができる。また、酵母は嫌気性条件下で糖類からアルコールと二酸化炭素を生成するが、タンパク分解酵素を含む酵母は培養液中のタンパク質をペプチドやアミノ酸に分解することができ、酵母が体内で摂取した糖から、ビタミンやアミノ酸などを生産することができる。なお、本発明は、少なくとも乳酸と酵母とを使用すればよく、更に、本発明の効果を損なわない範囲で麹菌、枯草菌、糸状菌、光合成細菌などが発酵系に含有されるものであってもよい。原料に付着する全ての細菌を除去することは困難である。本発明において、共棲発酵とは、乳酸菌と酵母とを共棲培養して行う発酵であり、また、発酵エキスとは、共棲発酵の発酵液から微生物および原料残渣を除去したものである。乳酸菌や酵母の共棲培養の栄養原は、多糖類と、野菜果物と、海藻である。前記多糖類としては、米、米糠、玄米、酒粕、蒸留粕、麦糠、ビール粕、米粉、麦粉、澱粉、イモ類などの天然原料由来の多糖類が好ましい。より好ましくは、米、米糠、玄米、酒粕、米粉であり、特に好ましくは、米、米糠および/または玄米である。玄米や米糠には、アミラーゼを含む胚芽が含まれるため、澱粉のアミロースやアミロペクチンをグルコース、マルトース、オリゴ糖に変換することができ、多糖類を原料として円滑に乳酸菌と酵母による共棲発酵を行うことができる。野菜果物の種類は特に問わないが、ミネラルや酵素を多く含むものを好適に使用することができる。糖類、タンパク質とを含むものが好ましい。たとえば、パパイヤ、パイナップル、リンゴ、オレンジ、バナナ、ダイコン、ニンジン、キャベツ、キノコなどを好適に使用することができる。好ましくは、パパイヤである。パパイヤは、パパインなどのタンパク分解酵素を多く含み、培養液中のタンパク質をペプチドやアミノ酸に分解することができ、積極的なメラノイジン形成に関与する。パパイヤは、可食しうればよく完熟に限定されず未成熟の青パパイヤであってもよい。青パパイヤの酵素量は完熟パパイヤよりも含有量が多く、特に好ましい。海藻としては特に限定はなく、昆布、ヒジキ、モズク、若布などの褐藻類、アサクサノリ、テングサなどの紅藻類、アオサ、アオノリ、カサノリ、サボテングサ、フサイワヅタ、ミルなどの緑藻類などを好適に使用することができ、より好ましくは褐藻類である。特には、昆布、ヒジキ、モズクなどが好ましい。これら海藻には、ミネラルや多糖類のほかアミノ酸が含まれる。本発明で使用する乳酸菌や酵母は、共棲発酵によって最終的に発酵エキス中にメラノイジンを生産できればよい。乳酸菌としては、ラクトバシラス属、ビフィドバクテリウム属、エンテロコッカス属、ラクトコッカス属、ペディオコッカス属、リューコノストック属、ストレプトコッカス属などがあり、使用する原料に応じて適宜選択することができる。本発明では、米、米糠、玄米、酒粕、蒸留粕、麦糠、ビール粕、米粉、麦粉、澱粉などの天然原料由来の多糖類を使用するため、糖類を資化できる乳酸菌を使用することが好ましい。このような、糖類を資化できる乳酸菌としては、ラクトバシラス属、ストレプトコッカス属、リューコノストック属などの乳酸菌がある。ラクトバシラス属の乳酸菌としては、ラクトバシラスカゼイLactobacilluscasei、ラクトバシラスプランタルムLactobacillusplantarum、ラクトバシラスラクティスLactobacilluslactis、ラクトバシラスアミロフィルスLactobacillusamylophilus、ラクトバシラスサシドフィルスLactobacillusacidophilus、ラクトバシラスブルガリクスLactobacillusbulgaricus、ラクトバシラスサンフランシスコLactobacillussanfrancisco、ラクトバシラスフェルメンタムLactobacillusfermentum、ラクトバシラスブレビスLactobacillusbrevis、ラクトバシラスラムノズスLactobacillusrhamnosus、ラクトバシラスパラカゼイLactobacillusparacaseiなどがある。またストレプトコッカス属の乳酸菌としては、ストレプトコッカスファエカリスStreptococcusfaecalis、ストレプトコッカスファエシウムStreptococcusfaeciumなどがある。またリューコノストック属の乳酸菌としては、リューコノストックマエセンテロイデスLeuconostocmesenteroides、リューコノストックラクティスLeuconostoclactisなどがある。酵母としては、サッカロマイセス属、カンジダ属、トルロプシス属、ジゴサッカロマイセス属、シゾサッカロマイセス属、デバリオマイセス属、ゲオトリクム属、ウィッケルハミア属、フェロマイセス属などがある。本発明では、出芽酵母であるサッカロマイセス属、や分裂酵母であるシゾサッカロマイセス属、カンジダ属などを好適に使用することができる。好ましくは、サッカロマイセスセレビシエSaccharomycescerevisiaeである。乳酸菌と酵母とを使用して共棲発酵するには、乳酸菌と酵母との共棲培養液に上記した原料の全てを一度に仕込んでもく、各原料の発酵段階を均一に調整するため、それぞれの原料を別個に乳酸菌や酵母の培養液に仕込んで予備発酵し、その後に混合して共棲発酵させてもよい。乳酸菌や酵母の種類、これらの栄養源とする多糖類や野菜果物、海藻などの種類に応じて適宜選択することができる。本発明で使用する乳酸菌や酵母は、予め予備培養したものを使用する。乳酸菌の予備培養液中の濃度は、105~1010個/mLであり、酵母の予備培養液中の濃度は、105~1010個/mLである。なお、原料湿重量の仕込み量は、予備培養液の0.01~100w/v、より好ましくは0.1~30w/vである。多糖類100質量部に対する野菜果物の配合割合は、1~100質量部、より好ましくは3~50質量部である。また、多糖類100質量部に対する海藻の配合割合は、0.1~50質量部、より好ましくは1~30質量部である。多糖類として玄米と米糠とを使用し、野菜果物としてパパイヤを、海藻として昆布とモズクを使用して発酵エキスを調製する方法を説明する。まず、蒸した玄米を乳酸菌と酵母との共棲培養液に仕込む。使用する乳酸菌として、多糖類を資化しうる乳酸菌を使用する。これにより、玄米に含まれる多糖類をスクロースやグルコースなどに分解することができる。乳酸菌により多糖類が分解され、かつ乳酸が産生される。酵母は、耐酸性に優れるため、乳酸酸性の発酵液の中でも増殖し、アミノ酸などを産生することができる。上記玄米とは別個に、乳酸菌と酵母との共棲培養液にパパイヤと、海藻とをそれぞれ別個に仕込んで予備発酵させたものとを調製しておく。パパイヤは、タンパク分解酵素その他を多く含むため、これら酵素によって発酵液中に含まれる成分が更に分解される。各発酵液内の分解の程度が略均一になったらこれらを混合して共棲発酵させる。発酵は、使用する微生物の種類や原料の種類、原料の仕込み量などによって適宜選択することができ、一般には、5~100週間、より好ましくは10~50週間、特に好ましくは20~40週間である。上記は、発酵の開始から終了までの時間である。また、発酵温度は20~40°Cである。発酵の進行に伴い、乳酸菌の培養液や酵母の培養液を追加してもよい。なお、酵母と乳酸菌とは、ともに嫌気的条件下でも好気的条件下でも生育することができ、酸素の有無で生産物も異なる。たとえば、酵母は、嫌気的条件下で糖を原料としてアルコールを生産するが、乳酸菌は、好気的条件下で乳酸の産生が進行する。本発明では、発酵の前半では乳酸菌の活性を高めることが好ましく、発酵の後半では他の微生物の活性を高めるように制御することが好ましい。発酵の前半を好気的条件に制御することで乳酸菌の産生する乳酸によって混入する雑菌を滅菌しうるからである。このような制御は、pH、溶存酸素量、温度を制御して行うことができる。これにより、乳酸菌と酵母とにより、長期間に亘る共棲発酵を行うことができる。発酵の終了は、発酵液が褐色に変色することで知ることができる。なお、発酵終了後に、発酵液を酸素を供給しない条件で2~100週間熟成させてもよい。上記方法は、多糖類、野菜果物、および海藻とをそれぞれ別個に乳酸菌と酵母との共棲培養液で予備発酵する方法で例示したが、多糖類、野菜果物、および海藻の全量を乳酸菌と酵母との予備発酵液に仕込んで共棲培養してもよく、多糖類を乳酸菌と酵母との共棲培養液で予備発酵し、野菜果物と海藻とを乳酸菌の培養液で予備発酵し、これら予備発酵液を混合して共棲発酵してもよい。メラノイジンは、原料が微生物によって還元糖とアミノ化合物とに分解された後に共棲する微生物によって生成されると考えられる。したがって、発酵の全工程が共棲発酵である必要はない。なお、発酵工程で、仕込み水を添加し、必要に応じて菌液を追加してもよい。発酵またはその後の熟成後、ろ過、遠心などにより乳酸菌、酵母その他の微生物を除去して発酵エキスとする。pHは一般に4~8.5である。発酵エキスをイオン交換樹脂、あるいは合成吸着樹脂等で処理して、発酵産物であるメラノイジンを分離、回収することができる。イオン交換樹脂や合成吸着樹脂等によって、発酵エキスに含まれる有機酸等を除去し、褐色のメラノイジンを得ることができる。使用するイオン交換樹脂としては、イオン交換基がスルフォン酸基、リン酸基、カルボキシメチル基、ジエチルアミノ基、及び4級アミノエチル基等が使用可能であり、陽イオン交換樹脂でも陰イオン交換樹脂でも共に使用が可能である。また、合成吸着樹脂三菱化学株式会社製のダイヤイオン、セパビーズなどを利用することで、メラノイジンを得ることもできる。本発明で使用するメラノイジンは、分子量500~3000である。このメラノイジンは、後記する実施例に示すように、血管新生阻害作用を有することが判明した。本発明のメラノイジンを有効成分とする血管新生阻害剤の投与経路としては、経口、静脈内、腹腔内、皮下、筋肉内、動脈内、経皮、直腸、経鼻、眼球および局所投与などで投与することができる。疾患の種類や疾患の進行状況に応じて好適な投与経路を選択することができる。なお、投与量は、投与経路によって相違し、経口投与の場合は、1~100mg/日であり、一日に複数回に分割して摂取することができる。本発明の血管新生阻害剤は、いかなる形態に調製してもよい。たとえば、注射用調製物真性溶液、懸濁液、または乳濁液や局所用調製物軟膏、パッチ、スプレー、溶液など、経口用量形態錠剤、カプセル、軟カプセル、水溶性医薬、丸薬、顆粒剤などに調製することができる。本発明の血管新生阻害剤は、糖尿病性網膜症、血管新生緑内障、炎症性皮膚疾患、関節炎リウマチ、変形性関節症、粥状動脈硬化症、心筋梗塞等の閉塞性疾患等など長期に亘る慢性疾患の予防剤として使用することができる。次に実施例を挙げて本発明を具体的に説明するが、これらの実施例は何ら本発明を制限するものではない。製造例1グルコース2モル、グリシン2モル、炭酸水素ナトリウム0.2モル濃度の溶液をpH6.8に調整した。95°Cで7h還流を行いメラノイジンを合成した。反応液を冷却した後、透析膜Viskase製、商品名UC36-32-100にて1週間透析を行った。内液を凍結乾燥し、乳鉢で粉砕して粉末状にした。この粉末状物の水溶液について、日本分光製V-570を使用してUVスペクトルを測定した。結果を図3に示す。UVスペクトルは、特定の場所に吸収ピークが見られず、波長300nmから700nmにむかって吸収がなだらかに減少するものであった。製造例2乳酸菌として、ラクトバシラスカゼイLactobacilluscasei、ラクトバシラスプランタルムLactobacillusplantarum、ラクトバシラスラクティスLactobacilluslactisを使用し、酵母としてSaccharomycescerevisiaeを使用した。これを米糠からなる培養液で予備発酵させた液を種菌発酵液とした。乳酸菌と酵母とを含む種菌発酵液に蒸し玄米を仕込み、乳酸菌の産生が促進される条件で一次発酵させた。同様にして乳酸菌と酵母とを含む種菌発酵液にパパイヤと海藻昆布とモズクとをそれぞれ別個に仕込み、玄米と同様に一次発酵させた。なお、仕込み原料は、蒸し玄米100質量部に対し、パパイヤ25質量部と海藻8質量部とし、全発酵液中の仕込み原料の比率は1.5質量とした。その後、各共棲発酵液を混合した。溶存酸素量を調整して乳酸菌以外の菌の活性が促進する条件で発酵を継続した。なお、発酵工程では、必要に応じて純水や種菌発酵液を追加した。原料の分解が進み発酵液が褐色かつ澄明になったところを発酵の終点とした。一次発酵の開始から発酵の終了まで6ヶ月間を要した。ついで、発酵終了から6ヶ月間熟成した。熟成後の発酵液から直径0.45μmのフィルターを使用して菌体を除去し、発酵エキスを得た。pHは6.0であった。発酵エキスをスチレン系合成吸着剤三菱化学株式会社製、商品名ダイヤイオンHP-20を通過させ、発酵エキスに含まれる発酵産物を吸着させた。その後、カラムを水にて洗浄し、メタノールで溶離し、褐色のメタノール溶出画分を分取した。この褐色のメタノール溶出画分について、下記条件でゲルろ過HPLC分析を行った。ゲルろ過クロマトグラムを図1に示す。HPLC分析条件ポンプ:SHIMADZU製、LC-10ADvpデガッサー:SHIMADZU製、DGU-14Aオートインジェクター:SHIMADZU製、SIL-10ADvpシステムコントローラー:SHIMADZU製、SCL-10Avpダイオードアレイ検出器:SHIMADZU製、SPD-M10Avp蒸発光散乱検出器:SHIMADZU製、ELSD-LTカラム:ShodexOHpakSB-803HQ流速:0.8mL/min移動相:100mMリン酸緩衝液前記褐色の発酵産物の分子量分布を、プルランを分子量マーカーとして、上記HPLC測定条件と同条件において測定し、それにより較正曲線を作成し相対分子量分布を求めるサイズ排除クロマトグラフィー法により検討したところ、500~3000であった。ついで、前記褐色物質のUVスペクトルを測定した。測定は、日本分光製V-570を使用して行った。結果を図2に示す。UVスペクトルは、特定の場所に吸収ピークが見られず、波長200nmから700nmにむかって吸収がなだらかに減少するものであった。このスペクトルは製造例1のメラノイジンと波形が類似するものであった。また、褐色の発酵産物について、タンパク質、多糖、単糖は分光光度計を用いた比色法により、有機酸はイオンクロマトグラフィーにより、アミノ酸はアミノ酸アナライザーを使用し、脂質に関してはガスクロマトグラフィーを用いて分析を行った。同画分には、タンパク質、多糖、単糖、有機酸、アミノ酸、脂質は検出されなかった。よって、上記メタノール溶出画分の主成分をメラノイジンとした。実施例1血管新生キット倉敷紡績株式会社製、商品名血管新生キットKZ-1000を用いた。キットに付属の24ウェルプレートには、ヒト臍帯静脈血管内皮細胞HUVECとヒト繊維芽細胞とが包埋されている。キットに添付された血管新生専用培地-2に、VEGF-A倉敷紡績株式会社製、商品名KZ-1350を最終濃度10ng/mlになるように添加して培地を調製した。製造例2で得た発酵エキスを精製水で1に希釈した発酵エキス1希釈液、同10に希釈した発酵エキス10希釈液、製造例2で得たメラノイジン精製水にて終濃度100μgmLに調製を前記培地で10倍に希釈し、0.22μmのフィルターでろ過して試験液とした。陰性対照は50μMのスラミンを含む培地を使用した。各試験液について3つのウェルを使用し、各ウェルに試験液をそれぞれ500μlずつ添加した。なお、培地のみをウェルに添加したものを対照とした。試験液を添加した後、培養開始後4、7、9日目に培地交換を行い、37°C、5CO2雰囲気下に10日間培養を行った。培養11日目に、細胞を70エタノールで固定した。固定後、1BSA/PBSにてウェルを洗浄し、その後に抗CD31抗体を添加した。ついで1BSA/PBSでウェルを洗浄した後にアルカリフォスファターゼ標識抗IgG抗体を添加した。蒸留水にてウェルを洗浄した後に5-ブロモ-4-クロロ-3-インドリルフォスファターゼを添加し、形成された管腔を染色した。蒸留水で洗浄後に風乾し、各ウェルについて3枚の画像を撮影した。撮像画像を図4~8に示す。撮像画像を血管新生定量ソフトウエア倉敷紡績株式会社製、Ver.2により解析して管腔の面積および長さを評価した。結果を表1および図9に示す。図5に示すように、陰性対照であるスラミンを投与したウェルは、染色された帯状の管腔が観察されたが、培地のみのウェル図4と比較して管腔量が少なくかつ管腔の分岐も少なかった。一方、製造例2で得たメラノイジンを投与したウェル図8は、帯状の管腔が存在せず、スラミンよりも血管新生抑制効果が観察された。なお、発酵エキス1希釈液図6および発酵エキス10希釈液図7でも、培地のみのウェルと比較して染色された管腔量が少なく血管新生抑制効果が観察された。なお、図9に示すように、スラミンと発酵エキス1希釈液および発酵エキス10希釈液との血管新生抑制効果は、略同程度であった。表1に示すように、スラミンを投与したウェルでは、培地のみのウェルと比較して管腔の面積が50、長さも70に低減していた。また、発酵エキス1希釈液および発酵エキス10希釈液もともに培地のみのウェルと比較して管腔の面積が約50、長さも約70に低減したが、血管新生抑制効果に関する用量依存性は観察されなかった。一方、製造例2で得たメラノイジンは、培地のみのウェルと比較して管腔の面積が8、長さも13に低減しており、極めて強い血管新生抑制効果が観察された。