米糠、ふすま、及びブドウ糖のうち少なくとも1つを含んだ糖類と、牛蒡、ナッツ類、及びベリー類のうち少なくとも1つを含んだ食用材料と、を、前記糖類の重量を1としたときに前記食用材料の重量が0.5~5の比率になるように混ぜ合わせてなるトリュフ栽培用の培地。前記食用材料が粒状に粉砕された牛蒡であることを特徴とする請求項1に記載のトリュフ栽培用の培地。請求項1又は2に記載の培地にトリュフ種菌を注入して培養させたトリュフ菌糸体。請求項1又は2に記載の培地にトリュフ種菌を注入して培養させたトリュフ子実体。本発明は、このような事情に鑑みてなされたものであり、活性酸素消去能力の高いトリュフトリュフ子実体を提供することを目的とする。また、本発明は、活性酸素消去能力の高いトリュフを栽培するための培地及びこの培地を用いて培養されたトリュフ菌糸体を提供することを目的とする。本発明者は、鋭意検討の末、培地の原材料として、従来の方法において専ら使用されている大鋸屑に替えて、活性酸素吸収能力ORAC:OxygenRadicalAbsorbanceCapacityが高くかつ食用できる原料つまり、抗酸化力の高い食用材料を使用すれば、その培地のみならず、その培地に注入されたトリュフ種菌が食用材料を吸収することで、その培地で培養されるトリュフ菌糸体ひいてはトリュフ子実体も、従来のトリュフに比べて飛躍的に活性酸素消去能力を高くすることができることを見出し、本発明を完成するに至った。すなわち本発明は、例えば、以下の構成特徴を備えるものである。米糠、ふすま、及びブドウ糖のうち少なくとも1つを含んだ糖類と、牛蒡、ナッツ類、及びベリー類のうち少なくとも1つを含んだ食用材料と、を、前記糖類の重量を1としたときに前記食用材料の重量が0.5~5の比率になるように混ぜ合わせてなるトリュフ栽培用の培地。ここで、食用材料は、牛蒡、ナッツ類例えば、クルミ、及びベリー類例えば、ブルーベリーのうちから少なくとも1つ選択されているが、これらの野菜又は果物は、食用に供することができるとともにORAC値が非常に高いことが知られている。また、本発明では、従来の培地の原料としていた大鋸屑を全く使用せず、この食用材料が大鋸屑の代替物となっている。これにより、培養されるトリュフ菌糸体もそのまま食用可能な材料となるため、トリュフ菌糸体の利用範囲が拡大するメリットがある。なお、仕入等の原料コストの面からは、食用材料が牛蒡を含んでいることが好ましく、後述する本発明の効果を高めるには、例えば、1mm~10mm程度の粒径を有するように粒状に粉砕された牛蒡を使用することが好ましい。粒径が1mm未満の粒になると、牛蒡は粉末に近い状態になり、これを用いた培地は通気性悪く、菌糸体が良好に培養されないからである。一方、粒径が10mmを超えると、糖類と良く混合しないために適切な培地を作ることができないからである。また、米糠等の糖類と食用材料とを混合する際は、重量比が糖類を1としたときに、食用材料が0.5~5となるような重量比で混合することが好ましく、さらに好ましくは、食用材料が1~2となるような重量比で混合することが好ましい。ここで、食用材料の割合が0.5未満となると、トリュフが培養過程で栄養障害を起こすので好ましくない。一方、食用材料の割合が5を超えると、トリュフの培養に要する時間が許容できない程に長時間になるために好ましくない。また、本発明に適用するトリュフ種菌は、特に限定されないが、黒トリュフ学名:Tubermelanosporum用の種菌や、白トリュフ学名:Tubermagnatumpico用種菌、クロアミメセイヨウショウロ学名:Tuberaestivum用種菌が挙げられる。本発明によれば、活性酸素消去能力が非常に高いトリュフ菌糸体及びトリュフ子実体を容易に栽培することができる。先ず、本発明の培地とその培地によってトリュフ種菌を注入して培養させた培養物について説明する。実施例1の培地及び培養物本発明の実施例1の培養条件として、米糠05kg、牛蒡05kgと、を良く混ぜ合わせて培地とし、この培地にトリュフ菌子体10g、を注入してさらに混合し、無菌容器に移して無菌環境下のクリーンベンチ内に20°Cの温度で60日間保管した。60日間の培養後、この培養物1gを試験管20ml容量に採取し、80濃度のメタノール10mlを加えて、100~105°Cにて30分間ホットプレート中で加熱抽出した。この抽出液を取り出し、8000rpmで10分間、遠心分離操作を行って得られた上澄液を回収した。回収した上澄液は-20°Cで冷凍保存した。なお、後述する抗酸化力ORACの評価に際しては、この分析法による評価が適切に行えるように、上述した上澄液の濃度調整を行った。具体的には、冷凍保存しておいた上澄液から10μlを採り出し、25°Cに加温した後、80濃度メタノール溶液9990μlを加えて希釈した。実施例2の培地及び培養物本発明の実施例2の培養条件として、培地を用意する際の米糠と牛蒡との重量を、米糠05kg、牛蒡10kgと、に設定した点のみが実施例1と異なり、それ以外の点は実施例1と同じであり、その説明は省略する。比較例の培地及び培養物本発明のトリュフ培養物の作用効果を確認するために従来方法でもトリュフ培養物を作成し、これを比較例とした。具体的には、比較例の培地は、米糠05kgと大鋸屑10kgとを混合させたものであり、それ以外の点は実施例1と同じであり、その説明は省略する。活性酸素吸収能力ORACに関する効果確認ORACOxygenRadicalAbsorbanceCapacity:活性酸素吸収能力は1992年に米国農務省USDAと国立老化研究所NationalInstituteonAgingの研究者らにより開発された抗酸化力を示す指標である。このORACの分析法は、特に食品中の抗酸化力の分析に優れており、この分析法によるORACのデータベースは、野菜や果物などの食品素材や加工食品に至るまで充実している。ORAC分析原理一定の活性酸素種を発生させ、それによって分解される蛍光物質の蛍光強度を測定し、経時的に減少する蛍光強度の曲線を描いた場合、この反応系に抗酸化物質が共存すると蛍光物質の蛍光強度の減少速度が遅延する。この測定原理に基づき、検体もしくは標準物質存在下での蛍光強度の曲線下面積AUCAreaUndertheCurveと、検体等が存在しない状態ブランク状態でのAUCとの差netAUCと呼ぶ。を算出する。検体のnetAUCについては、濃度既知の標準物質Trolox登録商標のnetAUCに対する相対値を求める。その相対値を基にTrolox濃度に換算して検体の活性酸素吸収能力とする。なお、netAUCの単位は、μmolTE/gである。上述した実施例1、実施例2、及び比較例のトリュフ培養物に対して上記評価を行った。ここで評価に際しては、標準物質としてトロロックス1mMのトロロックス溶液を調製し、更に80メタノール溶液で0.782μM~50μM間の濃度を段階的に変えたトロロックス溶液を用意した。上記測定のため蛍光色素には、緑色色素であるフルオレセインを使用し、活性酸素消去反応開始剤ラジカル発生剤には、22’アゾビス二塩酸22’azobis2amidinopropanedihydrochlorideAAPHを使用した。蛍光強度をモニタリングするための分析機器には、96穴黒色プレート商品名OptiPlate96、PerkinElmer社製と、マルチラベルリーダ商品名ARVOX、PekinElmer社製とを用いた。なお、本評価の実施手順は、上記非特許文献1の評価手順を参考にした。図1に、ブランク状態、比較例、及び本発明の実施例の場合における蛍光強度減少のモニタリング結果を示す。また、以下の表1及び表2に、ブランク状態、各濃度の標準物質トロロックス溶液、比較例及び本発明の実施例1の分析結果AUC及びnetAUCを示す。なお、比較例及び本発明の実施例1として用いた培養物は、上述したように本評価のためにエタノールで1000倍希釈しているため、実際のトリュフ培養物のnetAUC抗酸化力は、その1000倍になると予測される。これらの測定結果より、従来の手法で用意された培地から培養された比較例の培養物に対して、本発明の培養物は高い抗酸化力を示すことがわかる。より具体的には、米糠と牛蒡との重量比が1:1の培地から培養された実施例1の培養物は、比較例の場合と比較して約3倍の抗酸化力netAUCを示すことがわかった。なお、図表に示さなかったが、米糠と牛蒡との重量比が1:2の培地から培養された実施例2の培養物では、実施例1と同様に、比較例の場合よりも高い抗酸化力を示すことがわかった。