脳の神経シナプスタンパク質であるGIT1Gprotein-coupledreceptorkinaseinteractingprotein1遺伝子を欠損した非ヒト哺乳類を注意欠陥多動性障害モデルとして使用する方法。1GIT1遺伝子を欠損した非ヒト哺乳類に、注意欠陥または多動の予防剤または治療剤の候補物質を投与する段階と、2前記段階1の候補物質を投与した後、前記非ヒト哺乳類の注意欠陥または多動テストを行う段階と、3前記候補物質を投与していない対照群と比較して注意欠陥または多動が減少した候補物質を選別する段階と、を含む注意欠陥または多動の予防剤または治療剤のスクリーニング方法。段階1の非ヒト哺乳類は、マウス、ラット、豚または猿であることを特徴とする請求項2に記載の方法。段階2の注意欠陥または多動テストは、注意欠陥、多動、散漫及び行動障害から選択される一つ以上を特徴とする疾患を有したGIT1遺伝子欠損マウスに行うことを特徴とする請求項2に記載の方法。段階1の候補物質は、ペプチド、タンパク質、非ペプチド性化合物、合成化合物、醗酵生成物、細胞抽出液、植物抽出液、動物組織抽出液または血漿であることを特徴とする請求項2に記載の方法。段階3のスクリーニング方法は、オープンフィールド試験Openfieldtest、ホームケージ活動性試験Homecageactivitytest、モリス水迷路試験Morriswatermazetest、物体認識試験Novelobjectrecognitiontest及び脳波図Electroencephealogram試験から選択される一つ以上であることを特徴とする請求項2に記載の方法。本発明は、脳の神経シナプスタンパク質であるGIT1Gprotein-coupledreceptorkinaseinteractingprotein1の遺伝子が欠損された、人間を除く、特に、哺乳類を注意欠陥多動性障害モデルとして提供することを目的とする。本発明は、GIT1遺伝子欠損マウスを使用してADHD候補物質である薬物を投与して回復を誘導することができる新たな薬物のスクリーニング方法を提供することを他の目的とする。本発明は、脳疾患の一種である注意欠陥または多動障害を有している人間を含む哺乳類からこのような中枢神経系疾患及び精神疾患の薬物をスクリーニングすることができ、治療予防することができる方法であって、GIT1遺伝子が欠損された、人間を除く哺乳類を使用する方法を提供する。上記中枢神経系疾患及び精神疾患は、睡眠障害、覚醒障害、睡眠発作narcolepsy、認知機能障害cognitivedisorder、ADHD、肥満症obesity、てんかんepilepsy、精神分裂症shizophrenia、うつ病、痛症及び薬物乱用/中毒からなる群から選択される何れか一つであることができる。本発明における注意欠陥または多動の予防剤または治療剤候補物質としては、集中力強化剤であるメチルフェニデートMethylphenidate、アンフェタミンd-Amphetamine及びペモリンPemolineから選択される一つ以上を使用することができるが、抗精神薬物として中樞神経を刺激するメカニズムを有しているだけに多くの副作用を発生させるおそれがあり、特に、不眠、反跳現象reboundphenomena、食欲低下、不快感、眩暈、易刺激性や不安及び苛立ちなどの症状が現われる可能性がある。さらに、上記候補物質は、ペプチド、タンパク質、非ペプチド性化合物、合成化合物、醗酵生成物、細胞抽出液、植物抽出液、動物組織抽出液または血漿などがあり、このような化合物は新規化合物であってもよく、公知の化合物であってもよい。このような候補物質は、塩を形成していても良い。候補物質の塩には生理学的に許容される酸例えば、無機酸などや塩基例えば、有機酸などなどの塩があり、このうち生理学的に許容される酸添加塩が好ましい。このような塩としては、例えば、無機酸例えば、塩酸、リン酸、臭化水素酸または硫酸などの塩または有機酸例えば、酢酸、ホルム酸、プロピオン酸、フマル酸、マレイン酸、コハク酸、酒石酸、クエン酸、リンゴ酸、シュウ酸、安息香酸、メタンスルホン酸またはベンゼンスルホン酸などの塩などが用いられる。上記のような候補物質を投与する方法は、例えば、経口投与、静脈注射、皮下投与、皮内投与または腹腔内投与のうち対象動物の症状、候補物質の性質などに合わせて適当に選択されることができる。また、候補物質の投与量は、投与方法、候補物質の性質などに合わせて適当に選択されることができる。本発明における候補物質の投与動物は、哺乳類、好ましくはマウス、ラット、豚及び猿から選択される一つ以上のものであってもよく、本発明者が発明したGIT1欠損マウスが最も好ましい。前記GIT1遺伝子は、脳のシナプスに存在し、神経突起の成長、樹状突起棘構造形成、シナプス形成、シナプスAMPA受容体の局在AMPAreceptorlocalizationなどに関与するものとして公知である。また、GIT1はハンチントンタンパク質と結合し、ハンチントン患者の脳ではGIT1タンパク質が分裂される現象が観察され、GIT1欠損マウスを用いた他の研究結果では樹状突起の成長と樹状突起棘の密度減少、そして学習及び記憶能力が損傷されることから、GIT1が脳で重要な機能をしていることが分かる。本発明における治療薬物または精神疾患をスクリーニングする方法は、神経細胞、特定遺伝子標的の細胞及び動物モデルを利用する方法であって、このうち選択される一つ以上を含むが、これに限定されない。前記神経細胞は、例えば、ドーパミン性神経細胞としてMES23.5細胞、MN9D細胞、PC12細胞、SHSY5Y細胞とCATH.a細胞等が含まれ、このようなドーパミン性神経細胞は、この細胞において変化されるバイオマーカーと神経保護ターゲットを見つけるために使用されている。特に、遺伝性パーキンソン病familialParkinso’sdiseaseを起こす遺伝子突然変異であるDJ-1、ParkinまたはPINK1の遺伝子の機能が欠損された場合に現われる変化により神経保護のための治療剤及びバイオマーカーを発見しようとする研究が試みされているが、前記細胞モデルはドーパミン神経細胞だけの細胞内環境が維持されておらず、細胞の起源が全く異なかったりまたは融合された細胞の遺伝的特性をともに保有している短所がある。また、特定遺伝子標的の細胞モデルによるスクリーニング方法も遺伝子欠損ではなくsiRNAのような遺伝子部分欠損の細胞モデルにより完全な遺伝子機能欠損の場合に現われる可能性のある変化に対するターゲット発見には充分でない点がある。本発明で前記細胞モデルとともに精神疾患の治療剤及び薬物をスクリーニングすることに使用される動物モデルとしては、SHR、ドーパミン輸送体を遺伝的に除去したマウスDAT-KOmice、パーキンソンDJ-1遺伝子欠損knockout動物、SNAP-25タンパク質が欠けたコロボーママウス及びGIT1遺伝子欠損マウスから選択される一つ以上を使用することが分かる。前記動物モデルからは、特に、分子、生化学的研究の進行に十分な純粋ドーパミン性細胞を得るのが難しく、実際にパーキンソン病の患者からもサンプルを得るのが難しい状態であると公知されている。例えば、パーキンソン発病に対する病因遺伝子としてのDJ-1に関する詳細なメカニズムに対しては明らかになっておらず、DJ-1遺伝子上の変異によりタンパク質が正常に生成されない場合にパーキンソン病が誘発されるという事実もまだ不明確である。従って、特に、本発明では、GIT1欠損マウスの注意欠陥、多動、散漫及び行動障害テストに、治療剤または薬物をスクリーニングする方法が使用されることが好ましいということが分かる。本発明におけるGIT1欠損マウスを使用した具体的なスクリーニング方法としては、オープンフィールド試験Openfieldtest、ホームケージ活動性試験Homecageactivitytest、モリス水迷路試験Morriswatermazetest、物体認識試験Novelobjectrecognitiontest及び脳波図Electroencephealogram、以下、EEGとする試験から選択される一つ以上を特徴とする方法を提供する。前記オープンフィールド試験及びホームケージ活動性試験により、GIT1欠損マウスに前記で提供される候補物質を投与する場合、正常マウスである対照群に比べて多動が驚くほどに改善される効果を示すことができ、モリス水迷路試験と物体認識試験のスクリーニング方法により、記憶、空間知覚及び学習能力が前記のように改善した効果を示す特徴があるため、前記候補物質の選別のための好ましい動物モデルとして使用されることができることが分かる。特に、本発明におけるGIT1欠損マウスは、システムレベルでのEEGによるスクリーニング方法により、前頭葉における非正常のシータ波領域の波形及び電力スペクトル密度を分析して、ADHDを有した哺乳類の大脳機能を評価する基準と、基底原因に対する新たな評価方法として提供できることが分かる。本発明は、GIT1遺伝子欠損マウスを使用して注意欠陥または多動障害発病の原因となる神経化学的要因、遺伝的要因及び環境的要因を分析し、このような疾患及び各種不安障害の原因を解読して、予防剤または治療剤をスクリーニングするための効果的な動物モデルとして提供することができる。以下、本発明を具体的な実施例を参照してより詳細に説明する。しかし、本発明は、下記実施例によって限定されるものではなく、本発明のアイディアと範囲内で様々な変形または修正することができることはこの分野における当業者においては明白なことである。この時に使用される技術用語及び科学用語において他の定義がない限り、この発明が属する技術分野における通常の知識を有した者が通常理解している意味を有する。また、従来と同様な技術的構成及び作用に対する重複説明は省略する。[実施例1]GIT1遺伝子欠損マウスの確認本発明におけるGIT1欠損マウスの製作に使用された胚性幹細胞EScell、FHCRC-GT-S10-12C1は、FredHutchinsonCancerCenterから購入した。EScellembryonicstemcellを500λのβ-mercaptoethanol、1v/vペニシリン/ストレプトマイシン、15v/vのFBS牛胎児血清を含む培養液DulbeccosModifiedEagleMedium、DMEM、Gibcoに培養した後、前記細胞をC57BL/6マウスの胚盤胞Blastcystに注入microinjectionした。注入された胚盤胞はICR代理母マウスの子宮に着床させてキメラマウスを製作した。前記キメラマウスはアグチ色の毛の発現と重合酵素連鎖反応PCRを用いて遺伝子型を確認した。前記キメラマウスは、C57BL/6種と129/SV/Jae種とそれぞれ交配して繁殖した。各種から得られた異型接合体Heterozygoteマウス間の交配により出たマウスを用いて本発明の実験に用いた。[実施例1-1]重合酵素連鎖反応を用いたGIT1遺伝子の欠損確認前記実施例1のGIT1遺伝子の欠損を確認するために大きく二つの実験方法を使用した。第一の方法は、重合酵素連鎖反応を用いる方法であって、GIT1遺伝子の特定部分を増幅することができるプライマーセットを用いて、GIT1遺伝子の欠損有無を確認することができた。また、GIT1欠損マウスと異型マウスのみに含まれている外来遺伝子であるβgeoを増幅することができるプライマーをともに使用して、各マウスの遺伝子型を正確に把握することができた。重合酵素連鎖反応に使用されたプライマーセットの塩基配列は下記表1のとおりである。前記表1のプライマーセットの位置は図1に表示されている。前記プライマーセットを使用して重合酵素連鎖反応を行う場合、正常マウスの場合には500塩基対サイズのDNA断片が増幅され、GIT1欠損マウスの場合には680塩基対サイズのDNA断片が増幅された。異型マウスでは前記の二つのサイズの塩基対断片が増幅された。このような重合酵素連鎖反応の結果は図2aに示されたように観察された。前記重合酵素連鎖反応のための混合物は、14.8μlの2次蒸留水、1.6μlの10mMdNTP、2.0μlのTaq重合酵素バッファー、0.4μlのTaq重合酵素Sungenetics、0.1μl100pMのプライマー、1μl100μg/mlのDNA原型で構成した。前記混合液は重合酵素連鎖反応を用いて遺伝子型を確認した。前記重合酵素連鎖反応は95°Cで5分間反応させた後、95°Cで30秒、55°Cで30秒、72°Cで40秒に構成されたサイクルを40回繰り返した。その後、72°Cで5分間反応させた後、前記の生成物を1アガロースゲルで電気泳動により確認した。前記実施例1のGIT1遺伝子欠損を確認するための第二の方法であって、前記GIT1タンパク質の欠損をウエスタンブロットWesternblotting実験を用いて確認した。ウエスタンブロットに使用する試料の製作のために8週齢以上の正常マウスとGIT1欠損マウスの全体脳組織を使用した。抽出した脳組織を均質化バッファーHomogenizationBuffer;0.32MSucrose、4mMHEPES、1mMMgCl2、0.5mMCaCl2、1mMPMSF、5μg/mlPepstatinA、2mMBenzamidin、2μg/mlLeupeptinと混合して均質機Homogenizerを用いて破砕した後、破砕された脳組織はブラッドフォードBradford実験により組織内のタンパク質濃度を確認した。前記のタンパク質を2XSDSバッファーpH6.8の100mMTrisCl、5β-Mercaptoethanol、4SodiumDodesylSulfate、0.2BromoPhenylBlue、20グリセロールと混合して、100°Cで10分間変性denaturalizationさせて脳組織試料を準備した。前記の過程により準備された脳組織試料を7.5アクリルアミドゲルに掛けて、16mAでタンパク質分離がなされるまで電気泳動した。電気泳動後にアクリルアミドゲルをニトロセルローストランスファーメンブレンNitrocellulosetransfermembrane;Whatmanに密着させた後、トランスファーバッファー14.4gGlycine、3.03gTris、200mlメタノール、800ml蒸留水に完全に浸漬した後、85Vで90分間電気泳動した。前記過程によりタンパク質はトランスファーメンブレンに移動され、移動されたタンパク質はGIT1抗体を用いて検出した。前記ウエスタンブロットを行うために、トランスファーメンブレンをPonceauS染色薬を用いて染色し、タンパク質の大略の位置を確認した。蒸留水でメンブレインを複数回洗浄してPonceauS染色薬を除去し、ブロッキング溶液5の脱脂粉乳をTBST溶液に溶解したものに30分間停滞した。その後、GIT1に対する抗体Neuromabを希釈1:1000したTBST溶液に1時間反応させた。前記GIT1タンパク質に結合していない抗体を除去するために10分間3回TBST溶液を用いて洗浄した。2次抗体を希釈110000したTBST溶液にメンブレインを30分間停滞して、GIT1抗体に2次抗体が結合されるようにした。その後、結合していない2次抗体を除去するために10分間3回TBST溶液を用いて洗浄し、前記メンブレインをECL溶液GEHealthcareに反応させた後、暗室でx-rayフィルムFujifilmに露出してGIT1タンパク質の有無を確認した。前記のような結果は、図2のbから観察されたように、GIT1-/-である同型マウスのみからGIT1遺伝子が欠損されることが確認された。[実施例2]GIT1欠損マウスのオープンフィールド試験Openfieldtest本発明のGIT1欠損マウスを用いて多動観察のために新たな環境でオープンフィールド試験Openfieldtestを行った。前記GIT1欠損マウスと対照群である正常マウスWildtypeは2ヶ月~5ヶ月のマウスを準備した。前記オープンフィールドはマウスに露出したことのない40-40-40cm横-縦-高さの白色のボックスを準備し、マウスをオープンフィールドの中央に配置した後、60分間の移動距離をビデオ撮影し、行動分析プログラムを用いて全体移動距離、平均移動速度、中央空間侵入の割合などの結果を分析した。前記オープンフィールドにおける行動分析のために、オープンフィールドにマウスを配置する直前に、注意欠陥多動性障害を予防するための薬物として使用されるアンフェタミン4mg/kg/day、1回とメチルフェニデート2mg/kg/day、1回を腹腔注射した後、直ちにオープンフィールド中央に配置した。前記のような実験結果は図3のaに示されたように、正常マウスに比べてGIT1欠損マウスの移動距離は大きく、アンフェタミンとメチルフェニデートを投与した結果、図3のbとcでGIT1欠損マウスの移動距離は正常マウスのように驚くほど回復することを観察することができた。しかし、正常マウスに前記のような二つの薬物を投与した場合、移動距離が大きいと観察されたことはアナログ応答であると認識された。[実施例3]GIT1欠損マウスのホームケージ活動性試験Homecageactivitytest本発明のGIT1欠損マウスを用いて見慣れた空間における多動症状を観察するために、ホームケージ活動性試験Homecageactivitytestを行った。本発明の試験は20-35-17cm規格のホームケージに前記の配置されたマウスを行動測定室に24時間配置して、マウスが行動実験室に馴化habituationするようにした。その後、12時間の明るい周期と12時間の暗い周期の間のマウスの行動をビデオ撮影し、動物行動分析プログラムを用いて全体移動距離を分析した。その結果、図4に示されたように、マウスの夜行性のため昼間にはマウスの行動が減少して移動距離が非常に短く、正常マウスとGIT1欠損マウスの間の移動距離に差がなかったが、行動が活発になる夜の場合には、本発明のGIT1欠損マウスが、親しい空間で、正常マウスに比べてより多い距離を移動し、多動を示す特徴があることを確認した。[実施例4]GIT1欠損マウスのモリス水迷路試験Morriswatermazetest本発明のGIT1欠損マウスを用いてモリス水迷路試験Morriswatermazetestによるマウスの空間学習及び記憶能力を測定した。前記モリス水迷路は直径120cmの白色の水槽に、不透明の直径10cmの踏み段を準備したものであって、前記マウスは一日に2回、30分ごとに踏み段の位置を把握して憶えるための訓練機会を有し、訓練は5日間連続して行われた。前記訓練による学習効果は図5に示したように、aでは正常マウスがGIT1欠損マウスに比べてより速い時間内に隠された踏み段を見つける結果が確認され、GIT1欠損マウスの空間知覚学習及び記憶能力が問題があることを確認することができた。また、bとcは、6日目に踏み段が除去された水槽で1分間のプローブテストprobetestを行い、水槽の各四分面でマウスが消耗する時間の割合を観察した結果、GIT1欠損マウスが実際に踏み段のある四分面で正常マウスに比べて時間を少なく消耗し、踏み段の位置を正確に通過する回数を動物行動分析プログラムにより分析した結果、GIT1欠損マウスが正常マウスに比べて踏み段の位置を正確に通過する回数が減少することが確認できた。[実施例5]GIT1欠損マウスの物体認識試験Novelobjectrecognitiontest本発明のGIT1欠損マウスを用いて物体に対する認識及び記憶能力を分析するための物体認識試験Novelobjectrecognitiontestは、オープンフィールド試験で使用されたオープンフィールドボックスで行われた。前記物体認識試験はサンプル期間Samplephaseと試験期間Testphaseとで構成された。サンプル期間中のマウスはオープンフィールドボックスに位置した同一の二つの物体を10分間探索し、これをビデオ撮影して前記マウスが二つの物体を観察した時間を記録した。その結果、図6で確認したように、aでは正常マウスとGIT1欠損マウスが物体を探索する時間は統計的に差がないと示された。また、例えば、二つの同一の物体のうち一つをマウスに露出しなかった新たな物体に変更し、24時間後に試験期間を行った。前記試験期間には10分が与えられ、この時間の間マウスが二つの物体を観察した時間を測定した。この場合、マウスの鼻先が物体に接触したり、マウスが物体から2cm以内で物体に向けていることを観察と規定した。本実験の物体認識及び記憶能力の回復を観察するため、サンプル期間20分前に、本発明のマウスに4mg/kg/dayの量のアンフェタミンあるいは食塩水を腹腔注射してオープンフィールドボックスに配置した。本実験結果、図6のbからは、GIT1欠損マウスが正常マウスに比べて新たな物体を認識する能力が劣ることが確認され、このような物体認識能力はADHD治療薬物であるアンフェタミンによって回復することを図6のcから確認することができた。[実施例6]GIT1欠損マウスのシータ領域の波形及び電力スペクトル密度PowerSpectrumDensityの分析本発明のGIT1欠損マウスを用いて前頭葉における非正常のシータ領域の波形及び電力スペクトル密度PowerSpectrumDensityの分析のための実験は、ケタミンketamine150mg/kgを腹腔注射して麻酔されたマウスの頭を定位固定stereotaxicして行った。EEG電極electrodeは右側前頭葉と左側前頭葉に挿入し、具体的な座標はブレグマBregmaを基準に前方2.8mm、側面0.8mmであり、定位固定stereotaxic機器を用いて正確な座標を算定して位置を取る。接地電極groundingelectrodeは後頭葉位置に挿入した。前記マウスは電極挿入後、一週間の回復期を送り、脳波測定時にEEGchamber内に挿入して1時間測定した。EEG信号はGrassmodel7HpolygraphGrassTechnologiesを用いて増幅した後、DIGIDATA1320AMolecularDevicesを用いて2000Hzのサンプリング周波数samplingfrequencyにデジタル化した後、pClamp8.0プログラムAxonInstrumentsを用いてデータを得て分析した。その分析結果は図7に示したように、aはGIT1欠損マウスの非正常のシータ波の波形が前頭葉から現れたことを示すものであり、bはパワースペクトル密度を示すものである。特に、アンフェタミンを投与した後には、cに示されたように、GIT1欠損マウスの多動と損傷された記憶力は、食塩水を投与した群より、非正常のシータ波の波形が回復することが分かった。