"配列番号1により定められる4アミノ酸の配列からなるエピトープタグ。請求項1記載のエピトープタグと標的タンパク質とを含む、天然に存在しない融合タンパク質。前記エピトープタグが前記標的タンパク質のC末端に直接的に又はリンカーを介して結合している、請求項2記載の天然に存在しない融合タンパク質。請求項1記載のエピトープタグをコードする、または請求項2もしくは3記載の融合タンパク質をコードする単離された核酸配列。請求項4記載の核酸配列を含むベクター。請求項5記載のベクターまたは請求項4記載の核酸配列を含む宿主細胞。請求項1記載のエピトープタグに特異的に結合する、または請求項2もしくは3のいずれか1項に記載の天然に存在しない融合タンパク質に含まれるエピトープタグに特異的に結合するアフィニティリガンド。前記アフィニティリガンドが抗体または抗体フラグメントまたはナノボディである、請求項7記載のアフィニティリガンド。i請求項7または8のいずれか1項に記載のアフィニティリガンドと、ii請求項2~3のいずれか1項に記載の天然に存在しない融合タンパク質と、iii場合によっては、天然に存在しない前記融合タンパク質に含まれる標的タンパク質に結合するリガンドとの複合体。前記複合体が結晶性である、請求項9記載の複合体。例えばアフィニティクロマトグラフィー、アフィニティ精製、免疫沈降、インビボイメージング、縦列アフィニティ精製、タンパク質検出、免疫化学、表面提示、FRET型用途、共結晶化等のアフィニティに基づく用途の、請求項1記載のエピトープタグおよび/または請求項7または8のいずれか1項に記載のアフィニティリガンドおよび/または請求項9記載の複合体の使用。前記タンパク質検出をELISA検出アッセイまたはウエスタンブロット分析において行う、請求項11記載の使用。前記アフィニティ精製をカラム上またはビーズ上で行う、請求項11記載の使用。天然に存在しない融合タンパク質を精製するための方法であって、a請求項2または3のいずれか1項に記載の天然に存在しない融合タンパク質を含有する溶液を、請求項7または8のいずれか1項に記載の固定化アフィニティリガンドを有する固体支持体に適用する段階、b前記固定化アフィニティリガンドと前記融合タンパク質との間で複合体を形成させる段階、c弱く結合したまたは未結合の分子を除去する段階、およびd結合分子を溶出する段階を含む、前記方法。天然に存在しない融合タンパク質を固体支持体上に固定化し、および/または捕捉するための方法であって、a天然に存在しない融合タンパク質を含有する溶液を、請求項7または8のいずれか1項に記載の固定化アフィニティリガンドを有する固体支持体に適用する段階、b前記固定化アフィニティリガンドと前記融合タンパク質との間で複合体を形成させる段階、およびc弱く結合したまたは未結合の分子を除去する段階を含む、前記方法。請求項7~8のいずれか1項に記載のアフィニティリガンドを使用することにより、サンプルまたは組成物中の天然に存在しない融合タンパク質を検出するための方法。請求項1記載のエピトープタグ、および/または請求項2もしくは3のいずれか1項に記載の天然に存在しない融合タンパク質、および/または請求項4記載の核酸配列、および/または請求項5記載のベクター、および/または請求項7もしくは8のいずれか1項に記載のアフィニティリガンド、および/または請求項9記載の複合体を含むキット。例えばアフィニティクロマトグラフィー、アフィニティ精製、免疫沈降、インビボイメージング、縦列アフィニティ精製、タンパク質検出、免疫化学、表面提示、FRET型用途、共結晶化等のアフィニティに基づく用途に使用するための、請求項17記載のキット。発明の詳細な説明本発明を、特定の実施形態に関して、および或る図面を参照して、詳細に説明することとするが、本発明はそれらに限定されるものではなく、特許請求の範囲のみにより限定される。特許請求の範囲におけるいずれの参照記号も前記範囲を限定するとは解釈されないものとする。記載されている図面は概要図に過ぎず、限定的なものではない。前記図面においては、要素の幾つかのサイズは例示目的で誇張されている場合があり、原寸法で描かれていない場合がある。含むなる語が本明細書および特許請求の範囲において用いられている場合、それは他の要素または段階を除外するものではない。単数名詞を指す表現が用いられている場合、これは、特に示されていない限り、その名詞の複数形を含む。更に、本明細書および特許請求の範囲における第1、第2、第3などの語は、類似要素を区別するために用いられており、必ずしも、連続的順序または年代順を示すために用いられているのではない。そのように用いられている語は、適当な状況においては交換可能であり、本明細書に記載の本発明の実施形態は、本明細書に記載または例示されている以外の他の順序で実施可能であると理解されるべきである。本明細書中に特に示されていない限り、本発明に関して用いられている科学技術用語および表現は、当業者により一般に理解されている意味を有するものとする。一般に、分子生物学、遺伝学ならびにタンパク質および核酸の化学およびハイブリダイゼーションに関して用いられている命名法ならびにそれらの技術は、当技術分野において良く知られており一般的に用いられているものである。特に示されていない限り、本発明の方法および技術は、一般に、当技術分野で良く知られている、ならびに本明細書の全体にわたって引用され記載されている種々の一般的およびより専門的な参考文献に記載されている通常の方法により行われる。例えば、Sambrookら,MolecularCloning:ALaboratoryManual,2ded.,ColdSpringHarborLaboratoryPress,ColdSpringHarbor,N.Y.1989;Ausubelら,CurrentProtocolsinMolecularBiology,GreenePublishingAssociates1992,および2002に対する補遺を参照されたい。本発明の第1の態様においては、4アミノ酸の配列からなるエピトープタグが特定されており、この場合、前記配列はEPEA配列番号により定められ、または配列番号1に対して少なくとも25、少なくとも50、好ましくは少なくとも75の配列同一性を有するアミノ酸配列により、または前記アミノ酸の少なくとも25、少なくとも50もしくは少なくとも75が同類アミノ酸により置換されているアミノ酸配列により定められる。本明細書中で用いるエピトープタグまたはアフィニティタグなる語は、タンパク質またはリガンドとの特異的相互作用を可能にする短いアミノ酸配列またはペプチドを意味する。本明細書中で用いる同類置換保存的置換は、前記アミノ酸配列内の少なくとも1つの残基が除去され、異なる残基がその位置に挿入されることを意味する。そのような置換は一般に表1に従い行われる。表1は、タンパク質内のアミノ酸の代わりに使用可能であり同類置換であると典型的にみなされうるアミノ酸を示す。本明細書中で用いる、2以上のポリペプチド配列の場合における同一または同一性なる語は、2以上の配列または部分配列が同一であること、あるいは配列比較アルゴリズムを用いた又は手動アライメントおよび目視検査による測定において比較ウィンドウまたは指定領域にわたって最大一致が得られるように比較され整列アライメントされた場合に、2以上の配列または部分配列が、特定された割合の同一アミノ酸残基を有する例えば、特定された領域にわたって75の同一性ことを意味する。特に、前記同一性は、4アミノ酸長である領域にわたって存在する。第2の態様においては、前記エピトープタグは分子に連結または結合されており、前記組合せは本明細書中では融合分子または融合構築物と称される。したがって、本発明は、本明細書に記載のエピトープタグを含む融合分子に関する。好ましくは、前記アフィニティタグは、関心のあるタンパク質または標的タンパク質に連結されている。前記エピトープタグは前記分子に直接的または間接的に連結されうる。前記タグは前記分子のいずれかの部位に、例えば前記分子の末端付近に、1以上の内部部位に、側鎖に、またはアミノ末端アミノ酸N末端に、またはカルボキシ末端アミノ酸C末端に連結されうる。また、2以上のエピトープタグが前記分子に連結されうる。好ましい実施形態においては、前記エピトープタグは、当業者によく知られた技術である遺伝的操作により前記組換えタンパク質の同じオープンリーディングフレーム内に前記エピトープタグをコードするDNA配列を配置することにより、標的タンパク質のC末端に連結されうる。本明細書中で用いる融合分子または融合構築物なる語は、一般に、天然に存在しない組成物、または天然に存在しない融合分子もしくは融合構築物を示す。間接的連結の場合、適当なリンカー配列は所望の分子と前記エピトープタグとの間に挿入される。ついで、前記リンカー配列内に切断部位が存在する場合、前記エピトープタグは、当技術分野で公知の方法を用いて、化学的または酵素的に除去されうる。好ましいリンカーは1~30アミノ酸長のペプチドであり、ペプチドEEGEPKKjeldsenら,WO98/28429;配列番号13またはEEAEPKKjeldsenら,WO97/22706;配列番号14;GGGGS配列番号81イムノサイレント免疫不活性リンカーSEQIDNO:81;プロテアーゼ切断部位、例えば、配列IEGR配列番号15を有する因子Xa切断部位、配列LVPR配列番号16を有するトロンビン切断部位または配列DDDDK配列番号17を有するエンテロキナーゼ切断部位を含むが、これらに限定されるものではない。他の適当なリンカーとしては、炭水化物、PEGに基づくリンカー、および当技術分野で利用可能な他のリンカーが挙げられる。好ましくは、前記アミノ酸リンカー配列は短く、前記タンパク質の生物活性および抗体フラグメントとの特異的相互作用を妨げない。適当な短いリンカー配列の非限定的な例は実施例例えば、GAAおよびGAGA配列番号12および表2に記載されている。本明細書中で用いる分子なる語は、抗体および酵素を含むタンパク質、ペプチド、ヌクレオチド、脂質、炭水化物、薬物ならびに補因子またはそれらの組合せを意味する。前記分子の性質は本発明にとって重要ではない。前記分子は種々の長さ、サイズまたは分子量のものであることが可能であり、当業者に公知の及び/又は望まれるいずれかの活性を有しうる。特定の実施形態においては、前記分子はタンパク質である。より詳しくは、本発明のエピトープタグはタンパク質またはその断片に結合され、前記組合せは融合タンパク質とも称される。実際、本明細書中で用いる融合タンパク質は、異種源に由来する2つのアミノ酸配列の融合体を含むポリペプチドを意味し、したがって天然に存在しない融合タンパク質と称されうる。前記タンパク質は、当業者に公知の及び/又は望まれるいずれかの活性、例えば免疫原性活性、酵素活性または結合活性を有しうる。前記タンパク質はまた、構造タンパク質でありうる。本発明のエピトープタグに連結されうる具体的なタンパク質その断片を含むには、例えば、ホルモン、酵素、サイトカイン、細胞内シグナリングペプチド、受容体、抗体、増殖因子、血液因子、ワクチン、レポータータンパク質、合成ペプチドが含まれる。具体的なタンパク質の非限定的な例は実施例に記載されており、例えば、とりわけ、蛍光タンパク質、抗体フラグメント、ウイルス調節タンパク質、膜タンパク質、細胞周期タンパク質である。特定の実施形態においては、前記タンパク質は細菌、酵母、ウイルス、哺乳動物、植物、昆虫などに由来する。本明細書中で用いるポリペプチド、タンパク質、ペプチドなる語は互換的に用いられ、コード化および非コード化アミノ酸、化学的または生化学的に修飾または誘導体化されたアミノ酸ならびに修飾ペプチドバックボーンを有するペプチドを含みうる任意の長さのアミノ酸の重合形態を意味する。当業者に明らかなとおり、本明細書に記載のタンパク質の種々の断片は組合されうる。前記断片は種々の長さのものでありうるが、これらは少なくとも4アミノ酸長であり、タンパク質の全長までであることが一般に好ましい。本発明の融合分子の製造は、当技術分野で公知の標準的な組換えDNA法を用いて行われうる。もう1つの実施形態においては、本発明は、本明細書に記載のエピトープタグをコードする単離された核酸断片、前記核酸断片を含む単離された核酸、本発明の融合分子をコードする単離された核酸、およびそのような核酸分子を含む組成物に関する。本明細書中で用いる核酸、ポリヌクレオチド、ポリ核酸なる語は互換的に用いられ、任意の長さのヌクレオチド、すなわち、デオキシリボヌクレオチドもしくはリボヌクレオチドのいずれか、またはそれらの組合せおよび/または類似体の重合形態を意味する。前記分子および前記エピトープタグをコードする核酸セグメントは、前記コードセグメントの転写および/または翻訳産物において前記セグメントが並置されるように、連続的でありうる。幾つかの実施形態においては、本発明のタグのコード配列と分子のコード配列とは、リンカーをコードする核酸配列により、または1以上の非コード配列により隔てられていることが可能である。したがって、本発明は、DNA分子からRNA分子へと転写され次いで前記RNA分子からタンパク質への翻訳の前に除去例えば、スプライシングされうる1以上の介在配列例えば、イントロンを含有する核酸分子を含む。本発明の核酸分子はインビトロで、インビボで、または無細胞転写の作用により合成されうる。好ましくは、まず、前記エピトープタグをコードするヌクレオチド配列が合成され、ついで、所望の分子またはタンパク質をコードするヌクレオチド配列に連結される。このようにして得られたハイブリッド遺伝子は、標準的な方法を用いて発現またはクローニングベクター内に組込まれうる。本発明のこの態様のベクターは二本鎖または一本鎖であることが可能であり、直鎖状、環状、コイル状、スーパーコイル状、ねじれ状、ニック状などこれらに限定されるものではないを含むいずれかのコンホメーションのDNA、RNAまたはDNA/RNAハイブリッド分子でありうる。本発明のこれらのベクターには、プラスミドベクターおよびウイルスベクター、例えばバクテリオファージ、バキュロウイルス、レトロウイルス、レンチウイルス、アデノウイルス、ワクシニアウイルス、セムリキ森林ウイルスおよびアデノ随伴ウイルスベクターこれらに限定されるものではないが含まれ、これらの全ては良く知られており、商業的供給源から購入可能である。本発明の方法において使用される融合分子を構築するためには、任意のベクターが使用されうる。特に、当技術分野で公知のベクターおよび商業的に入手可能なベクターおよびそれらの変異体または誘導体は、本発明に従い、本発明の方法で使用される1以上の組換え部位を含むように操作されうる。特に関心が持たれるベクターの一般的クラスには、原核性および/または真核性クローニングベクター、発現ベクター、融合ベクター、ツーハイブリッドまたは逆ツーハイブリッドベクター、ファージおよびリボソーム提示ベクター、TAPベクター、シャトルベクター種々の宿主において使用されるもの、突然変異誘発ベクター、転写ベクター、大きなインサートを受け入れるためのベクターなどが含まれる。関心のある他のベクターには、ウイルス由来ベクターM13ベクター、細菌ファージ8ベクター、アデノウイルスベクターおよびレトロウイルスベクターならびに高い、低い、および調節可能なコピー数のベクターが含まれる。必要な方法のほとんどはAusubelら,2007に見出されうる。原核性または真核性宿主内への導入のために調製されるベクター構築物は、典型的に、本発明の融合分子をコードする意図されるDNA断片を含む前記宿主により認識される複製系を含み、好ましくは、前記分子をコードするセグメントに機能的に連結された転写および翻訳開始調節配列をも含む。発現系は、例えば、複製起点または自律複製配列ARSおよび発現制御配列、プロモーター、エンハンサーおよび必要なプロセシング情報部位、例えばリボソーム結合部位、RNAスプライス部位、ポリアデニル化部位、転写終結配列およびmRNA安定化配列を含みうる。適当な場合には、前記タンパク質が細胞膜を越え及び/又は細胞膜内に留まること、あるいは前記細胞から分泌されることを可能にする、同一または関連種の分泌ポリペプチドからのシグナルペプチドも含まれうる。適当なプロモーターおよび他の必要なベクター配列は、前記宿主において機能するように選択される。細胞系と発現ベクターとの機能可能な組合せの例はSambrookら1989、Ausubelら編2007およびMetzgerら1988に記載されている。細菌、酵母、真菌、哺乳類、昆虫、植物または他の細胞における発現のための多数の有用なベクターが当技術分野で良く知られている。また、前記構築物を増幅可能遺伝子例えば、DHFRに連結して、前記遺伝子の複数のコピーが生じうるようにすることが可能である。適当なエンハンサーおよび他の発現制御配列に関しては、EnhancersandEukaryoticGeneExpression1983ColdSpringHarborPress,N.Y.をも参照されたい。そのような発現ベクターは自律複製可能であり、また、それよりは好ましくはないが、それらは、宿主細胞のゲノム内に挿入されることにより複製可能である。発現およびクローニングベクターは、選択可能なマーカー、すなわち、前記ベクターで形質転換された宿主細胞の生存または成長に必要なタンパク質をコードする遺伝子を含有しうる。そのようなマーカー遺伝子は、宿主細胞内に共導入された別のポリヌクレオチド配列上に含有されうるが、それは最も頻繁には前記クローニングベクター上に含有される。前記マーカー遺伝子が導入された宿主細胞のみが選択条件下で生存および/成長する。典型的な選択遺伝子は、a抗生物質、例えばカナマイシン、テトラサイクリンなど、または他の毒性物質に対する耐性を付与するタンパク質、b栄養要求性欠損を相補するタンパク質、あるいはc複合培地からは利用可能でない決定的に重要な栄養素を供給するタンパク質をコードする。適切な選択可能なマーカーの選択は宿主細胞に左右され、種々の宿主に対する適当なマーカーは当技術分野において公知である。この場合における組換え宿主細胞は、本発明の単離されたDNA分子を含有するように遺伝的に修飾されているものである。前記DNAは、個々の細胞型に適した、当技術分野で公知のいずれかの手段により、例えば形質転換、リポフェクション、エレクトロポレーションまたはウイルス媒介性形質導入これらに限定されるものではないにより導入されうる。本発明の融合分子の発現を可能にしうるDNA構築物は、当技術分野で公知の技術、例えばクローニング、ハイブリダイゼーションスクリーニングおよびポリメラーゼ連鎖反応PCRにより容易に調製されうる。クローニング、DNA単離、増幅および精製、DNAリガーゼ、DNAポリメラーゼ、制限エンドヌクレアーゼなどが関わる酵素反応ならびに種々の分離技術のための標準的な技術は、当業者に公知であり一般に用いられているものである。多数の標準的な技術がSambrookら1989、Maniatisら1982、Wu編1993およびAusubelら1992に記載されている。本明細書中で用いる単離されたポリペプチドまたは単離されたポリヌクレオチドは、それぞれ、天然に存在しない又はそれが元々存在していた天然環境中にはもはや存在しないアミノ酸配列またはポリヌクレオチド配列を意味する。もう1つの実施形態においては、本発明は、本発明の1以上の核酸分子例えば、本発明の1以上の融合分子をコードする核酸分子を含む宿主細胞を含む。本発明で使用されうる代表的な宿主細胞には、細菌細胞、酵母細胞、植物細胞および動物細胞が含まれるが、これらに限定されるものではない。本発明での使用に適した細菌宿主細胞には、エシェリキア属種Escherichiaspp.細胞、バシラス属種Bacillusspp.細胞、ストレプトマイセス属種Streptomycesspp.細胞、エルウィニア属種Erwiniaspp.細胞、クレブシエラ属種Klebsiellaspp.細胞、セラチア属種Serratiaspp.細胞、シュードモナス属種Pseudomonasspp.細胞およびサルモネラ属種Salmonellaspp.細胞が含まれる。本発明での使用に適した動物宿主細胞には、昆虫細胞最も格別なものは、キイロショウジョウバエDrosophilamelanogaster細胞、スポドプテラフルジペルダSpodopterafrugiperdaSf9およびSfZl細胞ならびにトリコプルサTrichoplusaHigh-Five細胞、線虫細胞特に、シーエレガントC.elegant細胞、鳥類細胞、両生類細胞特に、アフリカツメガエルXenopuslaevis細胞、爬虫類細胞および哺乳類細胞最も格別なものは、チャイニーズハムスター由来のもの例えば、CHO、サル由来のもの例えば、COSおよびVero細胞、乳児ハムスター腎BHK由来のもの、ブタ腎由来のものPKI5、ウサギ腎13細胞PKI3、ヒト骨肉腫細胞系143B、ヒト細胞系HeLaおよびヒト肝癌細胞系、例えばHepG2が含まれる。本発明での使用に適した酵母宿主細胞には、サッカロミセスSaccharomyces、シゾサッカロミセスSchizosaccharomyces、クライベロミセスKluyveromyces、ピチアPichia例えば、ピチアパストリスPichiapastoris、ハンゼヌラHansenula例えば、ハンゼヌラポリモルファHansenulapolymorpha、ヤロウィアYarowia、シュワニオミセスSchwaniomyces、シゾサッカロミセスSchizosaccharomyces、ザイゴサッカロミセスZygosaccharomycesなどが含まれる。サッカロミセスセレビシエaccharomycescerevisiae、エスカールスバーゲンシスS.carlsbergensisおよびケイラクチスK.lactisは最も一般的に使用される酵母宿主であり、簡便な真菌宿主である。前記宿主細胞は懸濁またはフラスコ培養物、組織培養物、器官培養物などとして提供されうる。あるいは、前記宿主細胞はまた、トランスジェニック動物でありうる。本発明の核酸分子および/またはベクターの1以上を含む宿主細胞を製造するために本発明の核酸分子および/またはベクターを本明細書に記載の宿主細胞内に導入するための方法は当業者に良く知られている。例えば、本発明の核酸分子および/またはベクターは、感染、形質導入、トランスフェクションおよび形質転換良く知られた技術を用いて宿主細胞内に導入されうる。本発明の核酸分子および/またはベクターは、単独で、あるいは他の核酸分子および/またはベクターと共に導入されうる。あるいは、本発明の核酸分子および/またはベクターは、沈殿物、例えばリン酸カルシウム沈殿物として、または脂質との複合体として、宿主細胞内に導入されうる。本発明の核酸分子および/またはベクターを宿主内に導入するためには、エレクトロポレーションも用いられうる。同様に、そのような分子は、化学的にコンピテントな細胞、例えば大腸菌E.coli内に導入されうる。前記ベクターがウイルスである場合、それはインビトロでパッケージ化パッケージングされ、またはパッケージング細胞内に導入されることが可能であり、そのパッケージ化ウイルスは細胞内に形質導入されうる。したがって、本発明のこの態様に従い本発明の核酸分子および/またはベクターを細胞内に導入するのに適した多種多様な技術は良く知られており、当業者にとって常套的なものである。そのような技術は、例えばSambrookら1989、Watsonら1992およびWinnacker1987に詳細に概説されており、これらは、これらの技術を詳述する多数の実験的マニュアルの一例であり、それらの全体をそれらの関連開示に関して参照により本明細書に組み入れることとする。もう1つの態様においては、本発明は、前記エピトープタグに特異的に結合するアフィニティリガンドに関する。本明細書中で用いるアフィニティタグは本発明のタグに非共有結合し、任意の分子であることが可能であり、より詳細には、金属アフィニティリガンド、抗体、抗体フラグメント、ナノボディ、小分子または合成アフィニティリガンドでありうる。好ましい実施形態においては、前記アフィニティリガンドは、前記エピトープタグに特異的に結合するナノボディである。前記エピトープタグが標的分子に直接的または間接的に結合する場合、前記エピトープタグへの前記アフィニティリガンドの特異的結合が本発明において特に想定されることが明らかなはずである。本明細書中で用いる特異的に結合するおよび特異的結合なる語は、抗体、抗体フラグメントまたはナノボディが、種々の抗原の不均一混合物中に存在する特定の抗原に優先的に結合しうることを意味する。ある実施形態においては、特異的結合相互作用は、サンプル中の望ましい抗原と望ましくない抗原とを、幾つかの実施形態では約10~100倍以上例えば、約1000倍または10,000倍以上で識別する。特異性は、免疫グロブリンまたは免疫グロブリンフラグメント、例えばナノボディが、1つの抗原標的に、異なる抗原標的と比べて優先的に結合しうることを意味し、必ずしも高いアフィニティを示唆するとは限らない。本明細書に記載のタグに特異的に結合する抗体も本発明の一部である。抗体はポリクローナルおよび/またはモノクローナルでありうる。本明細書中で用いる抗体Abは、一本鎖全抗体を含む全抗体および抗原結合性フラグメントを含むと意図される。幾つかの実施形態においては、抗原結合性フラグメントは、Fab、Fab’およびFab’2、Fd、一本鎖FvscFv、一本鎖抗体、ジスルフィド結合FvsdFv、およびVLまたはVHドメインのいずれかを含むフラグメント、ならびにナノボディこれらに限定されるものではないを含む哺乳類抗原結合性抗体フラグメントでありうる更に本明細書を参照されたい。本発明のエピトープタグおよび/または融合分子の1以上は、当技術分野で良く知られている技術HarlowLane,1988を用いて、エピトープタグおよび/または融合分子に結合しうるポリクローナルおよび/またはモノクローナル抗体を製造するための免疫原として使用されうる。簡潔に説明すると、抗体は、本発明のエピトープタグおよび/または融合分子の全部または一部で適当な対象例えば、マウス、ラット、ウサギ、ヤギなどを免疫化することにより製造される。前記エピトープタグおよび/または融合分子あるいはそれらの断片が十分に免疫原性である場合、それは、前記対象を免疫化するために使用されうる。免疫原性を増強するために必要または望ましい場合には、前記エピトープタグおよび/または融合分子あるいは断片は適当な担体分子例えば、BSA、KLHなどに結合されうる。したがって、特定の実施形態においては、本発明はまた、i本発明のエピトープタグ、および/または本発明のエピトープタグを含む融合タンパク質で動物を免疫化し、ii前記エピトープタグに特異的に結合する抗体に関してスクリーニングする段階を含む、前記エピトープタグに特異的に結合する抗体を製造するための方法を含む。モノクローナル抗体は、例えばKohlerおよびMilstein1975に記載されているような通常の方法を用いて、本発明の1以上のエピトープタグおよび/または融合分子の全部または一部で免疫化された動物例えば、マウス、ラットなどの免疫細胞から製造されうる。したがって、本発明は、本発明のエピトープタグおよび/または融合分子に特異的なモノクローナル抗体、ならびにそのようなモノクローナル抗体を産生する細胞系を提供する。本発明の抗体は、鳥類および哺乳類を含むいずれかの動物から製造されうる。ナノボディNbは、天然に存在する一本鎖抗体の最小機能性断片または単一可変ドメインVHHであり、当業者に公知である。それらは、ラクダ科動物において見られる、重鎖のみの抗体に由来するHamers-Castermanら,1993;Desmyterら,1996。ラクダ科動物においては、軽ポリペプチド鎖を欠く免疫グロブリンが存在する。ラクダ科動物は旧世界ラクダ科動物カメルスバクトリアヌスCamelusbactrianusおよびカメルスドロメダリウスCamelusdromedariusおよび新世界ラクダ科動物例えば、ラマパッコスLamapaccos、ラマグラマLamaglama、ラマグアニコエLamaguanicoeおよびラマビクグナLamavicugnaを含む。前記単一可変ドメイン重鎖抗体は本明細書においてはナノボディまたはVHH抗体と称される。ナノボディNanobody商標、ナノボディズNanobodies商標およびナノクローンNanoclone商標はAblynxNVBelgiumの商標である。Nbsの小さいサイズおよび特有の生物物理的特性は、一般的でない又は隠れたエピトープの認識に関して、およびタンパク質標的の腔または活性部位内への結合に関して、通常の抗体フラグメントを凌駕する。更に、Nbsは二重特異性および二価抗体として設計されることが可能であり、またはレポーター分子に結合されうるConrathら,2001。Nbは安定であり、胃腸系内で存在し続け、容易に製造されうる。したがって、Nbsは、薬物発見および治療を含む多数の用途で使用されうるSaerensら,2008。本明細書中で用いるエピトープはポリペプチドの抗原決定基を意味する。エピトープは、前記エピトープに特有な空間的コンホメーションにおいて3個のアミノ酸を含みうるであろう。一般に、エピトープは少なくとも4個、5個、6個、7個のそのようなアミノ酸からなり、より通常は、少なくとも8個、9個、10個のそのようなアミノ酸からなる。アミノ酸の空間的コンホメーションを決定する方法は当技術分野で公知であり、例えばX線結晶解析および二次元核磁気共鳴を包含する。本発明のナノボディは、一般に、4個のフレームワーク配列またはFRと3個の相補性決定領域またはCDRとを含むと考えられうる単一アミノ酸鎖を含む。相補性決定領域またはCDRなる語はナノボディにおける可変領域を意味し、抗原性標的に特異的に結合しうるアミノ酸配列を含有する。これらのCDR領域は個々の抗原決定基構造に対するナノボディの基本的特異性をもたらすと考えられる。そのような領域は超可変領域とも称される。ナノボディは3個のCDR領域を有し、それぞれはその他のものCDR1、CDR2、CDR3と称されるに対して非連続性である。本発明の幾つかの好ましいナノボディおよびそれらのCDRが本明細書に記載されている表3および4を参照されたい。前記CDR配列の記載はVドメインおよびV様ドメインに関するIMGT固有付番系IMGTuniquenumberingsystemに基づいているLefrancら,2003。特定の実施形態においては、本発明のナノボディは二価であり、化学的に又は組換えDNA技術により、重鎖の2つの一価単一ドメインを互いに結合させることにより形成される。もう1つの特定の実施形態においては、本発明のナノボディは二重特異性であり、それぞれが異なる特異性を有する2つの重鎖可変ドメインを互いに結合させることにより形成される。同様に、多価または多重特異性ナノボディを含むポリペプチドが、この場合に非限定的な例として含まれる。前記ナノボディの例には、配列番号18~26図1;表3を参照されたいにより定められるナノボディが含まれるが、これらに限定されるものではない。二価ナノボディの非限定的な一例は配列番号68により定められる。もう1つの実施形態においては、前記ナノボディは、配列番号27~42図1;表4を参照されたいから選択されるアミノ酸配列を有する相補性決定領域CDRの少なくとも1つを含みうる。より詳しくは、前記ナノボディは、配列番号18~26図1;表3を参照されたいからなる群から選択されうる。本明細書中で広義で用いるナノボディなる語は、特定の生物起源または特定の製造方法に限定されないことに注目すべきである。例えば、本発明のナノボディは、一般に、1天然に存在する重鎖抗体のVHHドメインを単離することにより、2天然に存在するVHHドメインをコードするヌクレオチド配列の発現により、3天然に存在するVHHドメインのヒト化により、またはそのようなヒト化VHHドメインをコードする核酸の発現により、4いずれかの動物種からの、特に哺乳類種からの、例えばヒトからの天然に存在するVHドメインのラクダ化により、またはそのようなラクダ化VHドメインをコードする核酸の発現により、5当技術分野で記載されているドメイン抗体もしくはDabのラクダ化により、またはそのようなラクダ化VHドメインをコードする核酸の発現により、6自体公知のタンパク質、ポリペプチドまたは他のアミノ酸配列を製造するための合成または半合成技術を用いることにより、7自体公知の核酸合成のための技術を用いて、ナノボディをコードする核酸を製造し、ついで、このようにして得られた核酸を発現させることにより、および/または8前記の1以上のいずれかの組合せにより得られうる。本明細書に記載の本発明の抗体の天然または合成類似体、突然変異体、変異体、対立遺伝子、ホモログおよびオルソログ本明細書中では類似体と総称されるを使用することも本発明の範囲内である。したがって、本発明の1つの実施形態においては、本発明の抗体なる語は、その最も広い意味においては、そのような類似体をも含む。一般に、そのような類似体においては、本明細書に記載の本発明の抗体と比較して、1以上のアミノ酸残基が置換、欠失および/または付加されていることが可能である。非限定的な例を挙げると、置換は、例えば、同類置換前記のもの;表1も参照されたいであることが可能であり、および/またはアミノ酸残基は、同じ位置に天然で存在する別のアミノ酸残基により置換されうる。したがって、本発明の抗体の特性を改善する、あるいは少なくとも、本発明の抗体の所望の特性または所望の特性のバランスもしくは組合せを大きくすなわち、前記抗体が、その意図される用途に、もはや適さない程度まで損なわない、いずれかの1以上の置換、欠失もしくは挿入またはそれらのいずれかの組合せは、本発明の範囲内に含まれる。当業者は、一般に、本明細書の開示に基づいて、そして場合によっては限られた程度の通常の実験これは、例えば、限られた数の可能な置換を導入し、このようにして得られた抗体の特性に対するそれらの影響を決定することを含みうるの後、適当な置換、欠失もしくは挿入またはそれらの適当な組合せを決定し選択することが可能であろう。更にもう1つの修飾は、標識抗体の、意図される用途に応じて、1以上の検出可能な標識または他のシグナル生成基もしくは部分の導入を含みうる。適当な標識、ならびにそれを結合させ、使用し、および検出するための技術は、当業者に明らかであり、例えば、蛍光標識例えば、フルオレセイン、イソチオシアナート、ローダミン、フィコエリトリン、フィコシアニン、アロフィコシアニン、o-フタルアルデヒドおよびフルオレスカミン、ならびに蛍光金属、例えばEuまたはランタニド系列からのその他の金属、りん光標識、化学発光標識または生物発光標識例えば、ルミナール、イソルミノール、サーロマティックtheromaticアクリジニウムエステル、イミダゾール、アクリジニウム塩、シュウ酸エステル、ジオキセタンまたはGFPおよびその類似体、放射性同位体、金属、金属キレートもしくは金属カチオン、またはインビボ、インビトロまたはインシトゥイメージングに特に適した他の金属もしくは金属カチオン、ならびに発色団および酵素例えば、リンゴ酸デヒドロゲナーゼ、ブドウ球菌ヌクレアーゼ、デルタ-V-ステロイドイソメラーゼ、酵母アルコールデヒドロゲナーゼ、アルファ-グリセロリン酸デヒドロゲナーゼ、トリオースリン酸イソメラーゼ、ビオチナビジンペルオキシダーゼ、ホースラディッシュペルオキシダーゼ、アルカリホスファターゼ、アスパラギナーゼ、グルコースオキシダーゼ、ベータ-ガラクトシダーゼ、リボヌクレアーゼ、ウレアーゼ、カタラーゼ、グルコース-VI-リン酸デヒドロゲナーゼ、グルコアミラーゼおよびアセチルコリンエステラーゼを含むが、これらに限定されるものではない。他の適当な標識は当業者に明らかであり、例えば、NMRまたはESR分光法を用いて検出されうる部分を含む。本発明のそのような標識抗体は、具体的な標識の選択に応じて、例えばインビトロ、インビボまたはインシトゥアッセイ自体公知のイムノアッセイ、例えばELISA、RIA、EIAおよび他のサンドイッチアッセイなどを含むならびにインビボイメージング目的に使用されうる。当業者に明らかなとおり、別の修飾は、例えば、前記の金属または金属カチオンの1つをキレート化するためのキレート化基の導入を含みうる。適当なキレート化基には、例えば、ジエチレントリアミン五酢酸DTPAまたはエチレンジアミン四酢酸EDTAが含まれるが、これらに限定されるものではない。更にもう1つの修飾は、特異的な結合ペア、例えばビオチン-ストレプトアビイン結合ペアの一部である官能基の導入を含みうる。そのような官能基は、本発明の抗体を、前記結合ペアの残り半分に結合した別のタンパク質、ポリペプチドまたは化合物に連結するすなわち、結合ペアの形成により連結ために利用されうる。例えば、本発明の抗体をビオチンに対してコンジュゲート化結合し、アビジンまたはストレプトアビジンに対してコンジュゲート化した別のタンパク質、ポリペプチド、化合物または担体に連結することが可能である。例えば、そのようなコンジュゲート化抗体は、例えば、検出可能なシグナル生成物質がアビジンまたはストレプトアビジンにコンジュゲート化されている系において、レポーターとして使用されうる。更にもう1つの実施形態においては、本明細書に記載の抗体、抗体フラグメントおよび/またはナノボディのいずれかをコードする核酸配列本明細書に定められているものも目的となる。更に、本明細書に記載の抗体、抗体フラグメントおよび/またはナノボディのいずれかをコードする核酸配列を含むベクター本明細書に定められているもの、ならびにそのようなベクターまたはそのような核酸を含む宿主細胞本明細書に定められているものをも提供する。本発明のもう1つの態様においては、i前記のアフィニティリガンドと、ii前記の天然に存在しない融合タンパク質と、iii場合によっては、天然に存在しない前記融合タンパク質に含まれる標的タンパク質に特異的に結合するリガンドとの複合体をも提供する。特定の実施形態においては、前記複合体は結晶性である。本明細書中で用いるリガンドなる語は、標的タンパク質に特異的に結合する分子を意味する。リガンドは、例えば、ポリペプチド、脂質、小分子、抗体または抗体フラグメント例えば、ナノボディでありうる。リガンドはまた、天然標的タンパク質に対する内因性天然リガンドであるリガンドである天然リガンドを含む。本明細書中で用いる複合体なる語は2以上の会合分子の一群を意味する。好ましい実施形態においては、複合体はタンパク質複合体でありうる。本明細書中で用いるタンパク質複合体または多タンパク質複合体なる語は、2以上の会合ポリペプチド鎖の一群を意味する。タンパク質複合体におけるタンパク質は非共有結合性タンパク質-タンパク質により連結される。四次構造は前記タンパク質複合体における会合折り畳みタンパク質の構造形態である。本発明のエピトープタグ、およびこれらのエピトープタグに特異的に結合するアフィニティリガンド、およびエピトープタグとアフィニティリガンドとの複合体、および/またはそれらのいずれかの組合せは、以下のものを含むそれらに限定されるものではないいずれかの目的を果たしうる:アフィニティ精製法に適した融合分子を製造する、前記エピトープタグに特異的に結合するアフィニティリガンドでの共精製に適した融合分子を製造する、アフィニティ精製法に適した融合分子を含有する、タンパク質および/または核酸の複合体を製造する、共有結合性または非共有結合性固定化に適した融合分子を製造する、サンプルまたは組成物中に融合分子が存在するかどうかを確認することを可能にする、組織内の融合分子を局在化することを可能にする、細胞内に融合分子を局在化する、前記融合分子と他のタンパク質/タンパク質複合体との相互作用を特定する、融合タンパク質の機能およびそれが細胞状態の変化にどのように応答するのかを決定する、細胞の寿命の間に前記融合タンパク質に何が生じるのかを決定する、クローン化遺伝子から誘導された新規タンパク質を特徴づける、前記エピトープタグに特異的に結合するナノボディとの共結晶化に適した融合分子を製造する。特に、本発明のエピトープタグ、およびこれらのエピトープタグに特異的に結合するアフィニティリガンド、およびエピトープタグとアフィニティリガンドとの複合体、および/またはそれらのいずれかの組合せは、アフィニティに基づく用途、例えばアフィニティクロマトグラフィー、アフィニティ精製、免疫沈降、インビボイメージング、縦列アフィニティ精製、タンパク質検出、免疫化学、表面提示、FRET型用途、結晶学などに使用されうる。前記用途における本明細書に開示されている汎用エピトープタグの有用性は実施例において非限定的に更に例示されている。特定の実施形態においては、本発明は、本発明の1以上のエピトープタグを含む融合分子の精製のための、前記エピトープタグおよび/またはアフィニティリガンドのいずれかの使用に関する。したがって、通常のクロマトグラフィーに関連した高度に特別設計された方法ではなく一般化されたプロトコールを用いて、分子を精製することが可能である。融合分子は、宿主細胞から、またはそれが分泌された宿主細胞培養から精製されうる。典型的には、宿主細胞からの精製の場合、前記宿主細胞を、標準的な技術例えば、酵素消化、音波処理、フレンチプレスなどを用いて細胞溶解して、前記融合分子を含むライセートを形成させる。ライセートまたは宿主細胞培地を適当なクロマトグラフィー媒体と、前記クロマトグラフィー媒体への前記融合分子の結合に適した条件下で接触させることにより、前記ライセートまたは宿主細胞培地から前記融合分子を精製することが可能である。バッチワイズ技術例えば、クロマトグラフィー培地を前記ライセートまたは培地と混合することによるものまたはカラム技術で、前記ライセートまたは培地をクロマトグラフィー媒体と接触させることが可能である。樹脂に結合した融合分子を1回以上洗浄して、いずれかの弱く結合した物質、すなわち、前記クロマトグラフィー媒体へ前記融合分子ほどは強固に結合しない物質を除去することが可能である。ついで、前記媒体を、当業者に公知の適当な溶出バッファーと接触させることにより、前記分子を前記媒体から溶出することが可能である。前記カラムからの前記分子の溶出は、一定pHにおいて、または直線的な若しくは不連続的に減少もしくは増加するpH勾配で行われうる。最適溶出条件は、存在する不純物の量およびタイプ、精製すべき物質の量、カラム寸法、使用するクロマトグラフィー樹脂などに左右され、場合に応じて通常の実験により容易に決定される。特定の実施形態においては、本発明は、a本明細書に記載のエピトープタグに連結された分子を含有する溶液を、本明細書に記載の固定化アフィニティリガンドを有する固体支持体に適用する段階、およびb前記固定化アフィニティリガンドと前記分子との間で複合体を形成させる段階、およびc弱く結合した又は未結合の分子を除去する段階、およびd結合分子を溶出する段階を含む、天然に存在しない融合タンパク質を精製するための方法に関する。本明細書に記載されているとおり、融合分子は、例えば本発明のタグと対象分子との間に位置する、プロテアーゼに対する切断部位を含みうる。前記クロマトグラフィー媒体からの溶出の後または前記媒体に尚も結合している間に、本発明の融合分子を、前記切断部位において切断するプロテアーゼ酵素を含む溶液と接触させることが可能である。したがって、特定の実施形態においては、前記精製方法は更に、前記エピトープタグを除去する段階を含む。前記精製方法は、当技術分野で公知の任意の方法でありうる。適当な精製方法は、アフィニティクロマトグラフィー例えば、免疫アフィニティクロマトグラフィー、固定化金属イオンアフィニティクロマトグラフィーIMAC、金属アフィニティ沈降、固定化金属イオンアフィニティ電気泳動および免疫沈降を含むが、これらに限定されるものではない。アフィニティクロマトグラフィーの場合、前記アフィニティ媒体は、以下のアフィニティリガンドの1以上に結合した固体支持体例えば、樹脂、磁性ビーズなどを含有する:Fe、Co、Ni、Cu、ZnまたはAl充填IMACリガンド、抗体、抗体フラグメント、ナノボディ、小分子または合成アフィニティリガンド例えば、Versaffm商標を使用して誘導されたリガンドまたはアプタマー。本明細書に示されているとおり、精製のための本発明のエピトープタグおよび/またはアフィニティリガンドの使用は、高度に精製されたタンパク質を良好な収率で与える。本明細書においてタンパク質に適用された場合の純度または精製されたなる語は、所望のタンパク質が、好ましくは、全タンパク質成分の少なくとも60、より好ましくは少なくとも70、より好ましくは少なくとも80、より一層好ましくは少なくとも約90、最も好ましくは少なくとも約95を含むことを示唆する。前記溶出段階は、とりわけ、小さな化合物、ペプチドを使用して、または高いイオン強度の溶液を使用して、またはpHを変化させることにより行われうる。特定の実施形態においては、前記融合分子は、過剰量の前記エピトープタグまたは過剰量の前記アフィニティリガンドによりアフィニティクロマトグラフィー媒体から溶出されうる。本発明は更に、a本明細書に記載のエピトープタグに連結された分子を含有する溶液を、固定化アフィニティリガンドを有する固体支持体に適用する段階、b前記固定化アフィニティリガンドと前記分子との間で複合体を形成させる段階、およびc弱く結合した分子を除去する段階を含む、天然に存在しない融合タンパク質を固体支持体上に固定化し、および/または捕捉するための方法を含む。前記方法は、固定化要素を使用して行わることが可能であり、前記固定化は、種々の固体支持体例えば、カラム、ビーズ、吸着剤、ニトロセルロース紙など上で種々の固定化手段を用いて行われうる。前記固定化アッセイは、例えば、前記タグに連結された分子に対する抗体に関してサンプルまたは組成物をスクリーニングするために用いられることが可能であり、あるいは試験化合物例えば、薬物、新規抗生物質などの大きなライブラリーをスクリーニングするためのスクリーニングアッセイの一部でありうる。前記スクリーニングアッセイは、好ましくは、マイクロプレート形態で行われる。任意の検出手段または方法が用いられうる。例えば、前記検出手段はプレートリーダー、シンチレーションカウンター、質量分析計または蛍光光度計でありうるであろう。本発明は更に、サンプルまたは組成物中に分子が存在するかどうかを確認するための方法に関する。例えば、本発明のエピトープタグは、レポーター分子放射能標識、アルカリホスファターゼ、GFP、ペルオキシダーゼなど;前記を参照されたいに融合したアフィニティリガンドを使用する融合分子の検出において使用されうる。特定の実施形態においては、本発明は、前記エピトープタグに特異的に結合する抗体での本発明の融合タンパク質の検出に関する。この実施形態は、組織または細胞下局在化実験、ELISA、ウエスタンブロッティングまたは他の免疫分析方法において有用でありうる。特定の実施形態においては、抗体抗体フラグメントまたはナノボディを含むは、イムノアッセイ、ELISA、ウエスタンブロット、ラジオイムノアッセイ、酵素イムノアッセイにおいて前記エピトープタグの検出に使用されることが可能であり、免疫細胞化学的方法において使用されうる。幾つかの実施形態においては、抗タグ抗体が溶液中に存在することが可能であり、認識されるべきタグが溶液中に存在することが可能であり例えば、免疫沈降、あるいは固体表面上に存在する又は固体表面に結合していることが可能である例えば、ウエスタンブロット。他の実施形態においては、前記抗体は固体表面に結合していることが可能であり、前記タグは溶液中に存在することが可能である例えば、免疫アフィニティクロマトグラフィーまたはELISA。本発明のタグおよび/または融合分子に対する抗体抗体フラグメントまたはナノボディを含むは、サンプル中の1以上の分子の存在、非存在または量を決定するために使用されうる。特異的に結合したタグおよび/または融合分子の量は、レポーター分子例えば、放射性、蛍光または酵素標識が結合している抗体を使用して決定されうる。あるいは、特異的抗体とポリペプチドとのポリペプチド-抗体複合体を検出するために、標識された二次抗体例えば、前記ポリペプチドに特異的な抗体を認識する抗体が使用されうる。本明細書に開示されているエピトープタグを使用する前記方法はハイスループットアプローチにも用いられうることが、当業者に明らかなはずである。更に、組合せタグ化も本発明の一部を構成する。もう1つの特定の実施形態においては、本発明のエピトープタグは、短いタグが好ましい又はタグが存在しないことが好ましい、タンパク質の結晶学においても有用でありうる。通常、タンパク質において非構造性部分が存在することは結晶化に不都合であるため、タグは除去される。前記柔軟性部分を除去するためには、限定的なプロテアーゼが使用される。タンパク質が本発明のエピトープタグでタグ化されたら、アフィニティリガンド、特にナノボディが前記タグに結合して、前記複合体全体をより可溶性にし、結晶化し易くし、前記複合体の構造を解析するのを助ける。Nbは、柔軟性ループを固定し又は結晶接触をもたらすことにより、結晶化を促すことが示されているLorisら,2003,Korotkovら,2009。更にもう1つの特定の実施形態においては、本発明はまた、天然条件下でタンパク質複合体を精製するための縦列アフィニティ精製TandemAffinityPurificationTAP方法における、本発明のエピトープタグおよび/またはアフィニティリガンドの使用を提供する。TAPタグ化方法Rigautら,1999;Puigら,2001は酵母プロテオームに非常に首尾よく適用されることが可能であり、種々の細胞および生物に適合化されている。しかし、前記方法は本質的に妥当なものであるが、それは幾つかの欠点を有する。特に、TAPタグのサイズは21kDaの範囲でありうる。タグが大きくなればなるほど、それが、単離されるべきポリペプチドの機能または構造を阻害する、あるいは前記ポリペプチド標的により切断または消化される可能性が大きくなる。TAPのための一般に使用されるタグの組合せは良く知られており、Li2010に要約されている。本発明のエピトープタグは、アフィニティに基づく用途のためのTAPタグの開発に組込まれうる。もう1つの態様においては、本発明はまた、本明細書に記載のアフィニティに基づく用途のいずれかにおける使用のためのキットを提供する。そのようなキットは、限定的なものではないが、以下の要素の1以上を含みうる:場合によっては検出可能な様態で標識されている、および場合によっては不溶性マトリックスまたは固体支持体に結合している、本発明の1以上のポリペプチド、場合によっては不溶性マトリックスまたは固体支持体に予め固定化されている、本発明の1以上のアフィニティリガンド、本発明の核酸、本発明のベクター構築物、当技術分野で公知の標識試薬、1組の説明、当技術分野で公知のバッファー、溶出成分、検出成分。好ましい実施形態、特定の構造および構成ならびに物質材料が本発明の方法および手段に関して本明細書に記載されているが、本発明の範囲および精神から逸脱することなく、形態および詳細における種々の変更または修飾が施されうる、と理解されるべきである。したがって、本発明は、本明細書に添付されている特許請求の範囲のみにより限定される。実施例1.α-シヌクレインに対するナノボディの単離、発現および精製ラクダ科動物ナノボディ、例えばNbSyn1a、NbSyn1b、NbSyn1cおよびNbSyn2、Nb85、Nb86、Nb87およびNb88を、α-シヌクレインUniprotアクセッション番号P37840で免疫化されたヒトコブラクダ、または2つのタンパク質、すなわち、α-シヌクレインAla53Thr突然変異体およびβ-シヌクレインUniprotアクセッション番号はQ16143であるで免疫化されたヒトコブラクダから単離した。α-シヌクレインとβ-シヌクレインとは前記タンパク質のN末端部分においては85の同一性を有するが、C末端部分においては両タンパク質はそれほど相同ではない±40。両タンパク質は同じC末端EPEA配列を共有する。実質的に公開プロトコールLauwereysら,1998;Conrathら,2001に従うことにより、または材料および方法に記載されているとおりに、ファージ提示により全てのナノボディを選択した。固定化α-シヌクレイン上のインビトロ選択は1つの結合物質ファミリー、すなわち、NbSyn1a、NbSyn1bおよびNbSyn1cを示したに過ぎなかった。10μMのNbSyn1aの存在下、固定化α-シヌクレイン上で第2のインビトロ選択を行った。この選択から、3ラウンドのパンニングの後にNbSyn2を得た。2つのタンパク質α-シヌクレインA53T突然変異体およびβ-シヌクレインで免疫化されたヒトコブラクダから、107個の独立クローンの、1つの独立したファージディスプレイライブラリーを構築した。このライブラリーを、2つの別々のインビトロ選択において、β-シヌクレインおよびα-シヌクレインA53T突然変異体に対して並行してパンニングした。前記ベータ-シヌクレインパンニングからNb85、Nb86およびNb87が回収された。また、これらの結合物質の2つNb85、Nb86をAla53Thrα-シヌクレイン上で選択した。1つの添加結合物質Nb88も前記Ala53Thrα-シヌクレインパンニングから回収された。したがって、Nb85およびNb86はβ-シヌクレインだけでなくα-シヌクレインA53Tにも結合するらしい。Nb88は、フレームワーク1およびCDR1における少数の点突然変異においてNb85と異なるに過ぎず、一方、CDR2とCDR3とは同一である図1。全てのナノボディを、C末端に6個のヒスチジンを有するようにpHEN6内に再クローニングした。実質的に公開プロトコールConrathら,2001に従い、固定化金属アフィニティクロマトグラフィーIMACおよびサイズ排除クロマトグラフィーを用いて精製を行った。実施例2.シヌクレインに対するナノボディのエピトープの特徴づけバックボーンアミド共鳴に対する摂動を観察することにより、α-シヌクレイン上のNbSyn2、Nb85およびNb87のエピトープをマッピングするために、15N-1H異種核単一光子相関分光法HSQCを用いた。未標識Nbの、15N標識α-シヌクレイン中への滴定は、後者のHSQCスペクトルにおける特異的共鳴の広がり及びシフトの両方を引き起こした。標識α-シヌクレインのHSQCスペクトルに対するNbSyn2、NbSyn85およびNb87の結合の効果を図2に示す。前記上パネルは、Nbの添加に際して得られた生スペクトルを表し、ここで、赤色ピークは遊離体に対応し、青色ピークは、種々のナノボディと複合体化しているα-シヌクレインのシグナルに対応する。図2の下パネルは、滴定剤とほぼ等しい乃至等しいモル濃度のNbを使用した滴定実験を要約している。用いた濃度範囲では、標識α-シヌクレインの、影響を受けたHSQC交差ピークのほとんどは完全に消失するか中間的な交換、または前記スペクトルの異なる領域に再出現した遅い交換。これは、結合の際の安定複合体の形成に非常に合致する。前記遊離および結合スペクトルにおける遊離シヌクレインのスペクトルのピークの相対強度を前記配列に沿って各アミノ酸に関してプロットした場合図2の下パネル、前記C末端領域は、前記ナノボディのそれぞれの結合に際して、化学シフトまたは強度に関して最大摂動に付される。これらのデータは、3つ全てのNbがα-シヌクレインのC末端領域に結合することを示した。実施例3.α-シヌクレインと相互作用するナノボディのアフィニティ測定α-シヌクレインへのNbSyn2の結合をモニターするために、等温滴定熱量測定ITCを用いた。20°C~37°Cの温度で測定を行った。前記データは、各場合において、NbSyn2とα-シヌクレインとの間の1:1の二分子会合に合致しており、それぞれ20°C、25°C、30°Cおよび37°Cにおいて106±21nM、130±23nM、99±17nMおよび260±69nMのKd値を示した。NbSyn2、およびα-シヌクレイン配列のpD135-A140NH2-DYEPEA-COOHを含むα-シヌクレインのペプチド断片を使用して、材料および方法に記載されているとおりに、同様のITC測定を行った。同様の結合特性が観察された。このことは、このペプチドがα-シヌクレイン上にNbSyn2のエピトープを含有することを示している実施例4を参照されたい。本発明者らは、対応するアフィニティおよびΔCp値が完全長α-シヌクレインとの相互作用の場合に非常に類似していることを見出した表5。この知見は、ΔCp値が、α-シヌクレインのC末端ペプチド内に位置するこれらの残基へのNbSyn2の直接的結合から圧倒的に生じ、前記分子の残部内の有意なコンホメーション変化の結果として生じるのではないことを証明している。実施例4.NbSyn2-ペプチド複合体の結晶化もう1つの実験において、本発明者らは、α-シヌクレインの残基132-140に対応するペプチドNH2-GYQDYEPEA-COOHと複合体化しているNbSyn2を結晶化した図6。前記複合体のX線構造において、本発明者らは、前記ペプチドの最後の6つのC末端残基に関してのみ、有意な電子密度を観察している。前記ペプチドの残りの残基は前記電子密度においては視認できず、このことは、それらが前記複合体において高度に柔軟性であり無秩序であることを示しており、それらがNbSyn2との特異的相互作用に関与しないことを示唆している。残基Asp135のみが不明瞭な電子密度を示しており図7:上の第1パネル、Tyr136に関しては明らかな密度が存在するが、この残基は対称性関連複合体との結晶充填接触に関与しており図7:上の第2パネル、このことは、Tyr136の側鎖のコンホメーションが、溶液中で、より柔軟性でありうることを示している。原子レベルでの前記構造の分析は、前記ペプチドが、NbSyn2のCDR3およびCDR2ループの残基により形成されるポケットにおいてNbSyn2に結合することを示している。CDR2およびCDR3ループの残基は、前記ペプチドの残基Tyr136、Glu137、Pro138、Glu139およびAla140との接触をもたらす。前記結合は主に側鎖相互作用によりもたらされ、本質的に主に静電気的である。尤も、前記ペプチドのPro138とNbSyn2のTyr105との間で重要な疎水性相互作用が生じ、この場合、Pro138の環状脂肪族環のCγおよびCδはTyr105の芳香環に対して垂直に積み重なる。Ala140のCβは前記ナノボディのCDR3およびCDR2ループにより形成されるポケットにおいて深く潜っており図6b、Ala140のC末端のカルボニル基はNbSyn2のArg50と塩橋を形成する図7。NbSyn2の残基と直接的な水素結合をもたらす、Ala140のカルボニル基ならびにPro138およびGlu137のカルボニル酸素とは別に、ペプチド主鎖原子は溶媒に露出され、または架橋水分子を介して前記ナノボディとの間接的接触をもたらす。α-シヌクレインPDB-コード2×6Mの9個のC末端残基を含むペプチドに結合したNbSyn2の結晶構造の決定は、NbSyn2がαシヌクレインの最後の4つのC末端残基に、より詳細には、C末端配列EPEA配列番号1に結合することを証明している図6。実施例5.タグ化GFPのアフィニティ精製NMR実験実施例2およびICTデータ実施例3は、ナノボディNbSyn2、Nb85およびNb87がα-シヌクレインのC末端に結合することを示している。X線構造実施例4は、NbSyn2が主に最後の4つのアミノ酸と相互作用することを証明している。これらのナノボディがこのC末端直鎖状4アミノ酸エピトープに結合することを更に確認するために、本発明者らは、種々のGFP-ペプチドハイブリッドを構築することを決めた。標準的なDNAクローニング技術により、C末端において種々のタグに融合したGFP緑色蛍光タンパク質の、4つの異なる構築物を作製した。それらの4つの構築物を、材料および方法に記載されているとおりにpBADmycHisベクター内にクローニングした。全てのGFPハイブリッドを大腸菌E.coliの細胞質内で発現させた。構築物CA1510で形質転換された細胞においては緑色蛍光は観察され得なかった。このことは、この融合タンパク質が十分には発現されないことを示している。しかし、これらの構築物で形質転換された誘導細胞の緑色蛍光により示されるとおり、CA1508、CA1509およびCA1511に関しては機能性GFP発現を得ることが可能であった。ナノボディNb85、Nb87、Nb88およびNbSyn2を大腸菌E.coliのペリプラズムにおいて標準的な方法により発現させた。次に、前記ナノボディの1つを含有するペリプラズム画分を、4つのタグ化GFPタンパク質の1つを含有する細胞ライセートと混合し、1時間インキュベートした。ついで、それらの種々のGFP-融合体を、IMACにより、これらの混合物からHisタグ化ナノボディと共に同時精製した。この同時精製実験においては、非特異的結合を避けるために高塩1MNaClを加えた。次に、同時精製されたNb-GFP複合体をイミダゾールによりカラムから溶出し、溶出画分をSDS-PAGEにより分析した図3。Nb85またはNbSyn2を使用して、CA1508およびCA1509によりコードされるタグ化GFPを粗細胞ライセート混合物から同時精製することが可能であった。最後のアラニンが前記タグから欠失しているGFP構築物CA1511を回収することはできなかった。このことは、このC末端Alaが、Nb85またはNbSyn2によるこれらのGFP融合体の結合に決定的に重要であることを示している。第2段階において、NbSyn2をセファロースマトリックス上に固定化することにより、アフィニティカラムを調製した。製造業者の説明に従い、NbSyn2をCNBr活性化セファロースに結合させた。別の実験において、GYQDYEPEAタグに融合したGFP構築物CA1508を大腸菌E.coli内で発現させた。細胞を遠心分離により回収し、細胞溶解させた。ついで、前記タグ化GFP構築物CA1508を含有するこの粗ライセートを、固定化NbSyn2を含有するアガローススラリーと混合し、4°Cで1時間インキュベートした。次に全てのビーズを小カラム内のフィルター上に回収し、非特異的結合を防ぐために10カラム体積cvの50mMTrispH7.5で、そして10cvの50mMTris/1MNaClpH7.5で洗浄し、50mMTrispH7.5で平衡化した。GYQDYEPEAタグ化GFPを種々のバッファーその全ては50mMTrisHClを含有するで溶出することを試み、pH7.5:0.5Mクエン酸、0.5MN-L-a-アスパルチル-L-フェニルアラニン-1-メチルエステルアスパルテーム、0.5Mアスパラートaspartaat/チロシン、0.5Mグルタミン酸/チロシン、0.5Mギ酸または0.5Mアジピン酸に対して滴定した。前記溶出液の蛍光を測定することにより、前記GFP融合体の溶出をモニターした。アジピン酸およびNaClは前記タグ化GFPを前記アフィニティマトリックスから溶出することが判明した。次に溶出液をSDS-PAGE上で分析し、この観察を証明した。前記GFP融合体に対応する分子量を有する1つの特異的バンドをSDS-PAGE上で特定することが可能であった図4。別の実験において、GFP-GYQDYEPEA融合体を粗ライセートからNbSyn2アフィニティカラム上に捕捉し、それを10cvのバッファーで洗浄し、前記タグ化GFPを750μMの合成遊離NH2-GYQDYEPEA-COOHペプチドで成功裏に溶出した図5。この場合、SDS-PAGE上で前記GFP融合体に対応する分子量を有する1つのバンドをも特定した。第2の高塩洗浄2MNaClでは、残りのタンパク質は前記カラムからほとんど溶出され得なかった。このことは、前記ペプチドがGYQDYEPEAタグ化タンパク質を前記合成GYQDYEPEAペプチドの存在下に定量的に溶出することを示している。結論としては、NbSyn2アフィニティカラムを使用して、GFP-GYQDYEPEA融合体CA1508を細胞ライセートから捕捉し、それをモル濃度のNaClもしくはアジピン酸で又はミリモル濃度の合成NH2-GYQDYEPEA-COOHペプチドで前記アフィニティカラムから溶出することが可能であった。実施例6.タグ化ナノボディのアフィニティ精製もう1つの実施例として、ナノボディこれは別のタンパク質に特異的であるをタグ化し、それを、NbSyn2アフィニティ樹脂を使用して精製した。タグ化ナノボディを得るために、材料および方法に詳細に記載されている2つの新たなプラスミドpMESy1およびpMESy2を構築した。pMESy1においては、元のHisタグを、より長いGYQDYEPEAにより置換した。pMESy2においては、4アミノ酸のEPEAタグを小さなGAAリンカーの後方にクローニングした。1つのVHH、Nb458無関係な抗原、すなわち、ピチアパストリスPichiapastorisのAox1を認識するもの;配列番号66を、PstIおよびEco91I部位を用いて、両方のベクターにおいてクローニングした。Nb458の両方のタグ化形態を大腸菌E.coliのペリプラズムにおいて発現させた。新鮮なペリプラズム画分を調製し、実施例4に記載されているとおりにセファロース-ビーズに架橋されたNbSyn2のスラリーと混合した。前記セファローススラリーを小カラムのフィルター上に集め、50mMTrisHClpH7.5で洗浄した。両方のタグ化ナノボディは、1MのNaClで、これらのカラムから成功裏に溶出されることが可能であった図8。結論としては、NbSyn2アフィニティカラムを使用して、Nb458-GYQDYEPEA融合体およびNb458-gaaEPEA融合体を細胞ライセートから捕捉し、それをモル濃度のNaClで前記アフィニティカラムから溶出することが可能であった。実施例7:ELISAにおけるEPEA-タグの適用まず、96ウェルプレートの種々のウェルを、それぞれ、C末端においてGYQDYEPEAでタグ化されたNb458で、およびGgaaEPEAタグでタグ化されたNb458でコートした。次に、前記プレートをPBS中の乳でブロッキングした。Hisタグ化NbSyn2NbSyn2のC末端にHisタグを使用し、ついで抗Hisマウスモノクローナル抗体および抗マウスアルカリホスファターゼコンジュゲートを使用して、両方の固定化EPEAタグ化Nb458が検出された。GYQDYEPEAでC末端においてタグ化されたNb458で、またはgaaEPEAでタグ化されたNb458でコートされたウェルにおいてのみ、乳でブロッキングされただけのブランクウェルと比較して有意なアルカリホスファターゼ活性を検出することが可能であった。次に、ELISAプレートの種々のウェルを1ヘキサヒスチジン-エピトープタグを有するNb458、2GYQDYEPEAタグ、および3gaaEPEAタグを有するNb458でコートした。全てのウェルを乳でブロッキングした。この実験においては、自製NbSyn2アルカリホスファターゼコンジュゲートでEPEAタグ化ナノボディを検出することはできたが、Hisタグ化ナノボディを検出することはできなかった。GYQDYEPEAおよびgaaEPEAタグ化構築物に関してのみ、明らかなシグナルが得られた図9。したがって、組換え発現されたタンパク質をELISAにおいて検出するために、短いEPEAタグをNbSyn2と共に使用することが可能のようである。実施例8:ウエスタンブロットにおけるEPEA-タグの適用ウエスタンブロット分析においてEPEA-タグNbSyn2の組合せを試験した。第1の実験において、GYQDYEPEAタグ化GFPCA1508およびα-シヌクレインをSDS-PAGE上で泳動させ、ニトロセルロースシートへ移した。一次抗体としてHisタグ化NbSyn2を、二次抗体としてマウスモノクローナル抗His-タグ抗体を、そしてブロットを現像するためにNBTおよびBCIPと共に抗マウスアルカリホスファターゼコンジュゲートを使用することにより、両方のブロット化タンパク質を可視化することが可能であった図10。類似したウエスタンブロット実験において、本発明者らの自製NbSyn2-アルカリホスファターゼコンジュゲートNbSyn2-APをNBTおよびBCIPと共に使用する単一段階で、ブロット化GYQDYEPEAタグ化Nb458CA2944、そしてまた、Nb458-gaaEPEACA2945を可視化することが可能であった図11。したがって、組換え発現されたタンパク質をウエスタンブロットにおいて検出するために、短いEPEAタグをNbSyn2と共に使用することが可能のようである。実施例9.EPEAタグでの大きなタンパク質ライブラリーのインビトロ検出および分析C末端EPEAタグ化タンパク質はNbSyn2-APでELISAにおいて検出されうることが実施例7から明らかである。このタグがハイスループット用途においても機能することを確認するために、本発明者らは、EPEAタグ化VHHの大きなファージ提示ライブラリーをスクリーニングするためにNbSyn2を使用した。この目的のために、ファージ提示ベクターpMESy2において免疫化ラマのVHHナノボディライブラリーをクローニングした。2つの異なる抗原に対するナノボディのサブセットを選択するために、ファージ提示による2つの異なるインビトロ選択を行った。1つの抗原に特異的であるナノボディに関するクローンのこれらのサブセットのスクリーニングを以下のとおりにELISAにより行った。抗原を96ウェルプレート上にコートし、プレートをブロッキングし、EPEAタグと融合した異なるVHH遺伝子を発現する別のクローンのペリプラズマ画分と共に各ウェルをインキュベートした。NbSyn2APコンジュゲートで検出を行った図12。両方の実験において、種々の特異的結合物質を特定した。したがって、ファージ提示ライブラリーの及び他のゲノミクスまたはプロテオミクスアプローチにより作製された組換えタンパク質のライブラリーのハイスループット分析において、組換え発現されたタンパク質を検出するために、短いEPEAタグをNbSyn2と共に使用することが可能のようである。実施例10.NbSyn2でのEPEAタグ化タンパク質のインビボ検出もう1つの一連の実験において、生きた真核細胞内の組換えタンパク質の発現を検出/可視化するための、EPEAタグの使用を検討した。この目的のために、2つの異なるタンパク質HIV-RevおよびGFPをEPEAタグ化Rev-GAGAGYQDYEPEA、Rev-GAGAEPEA、GFP-GYQDYEPEAおよびGFP-GAAEPEAし、真核細胞内の一過性発現のためにpcDNAトランスフェクションベクター内にクローニングした。EPEAタグ化タンパク質の検出を可能にするために、NbSyn2またはNbSyn1aをmKO1またはGFPに融合させ、pcDNA内にクローニングしてNbSyn1a-mkO1、NbSyn1a-GFPおよびNbSyn2-GFP融合体を得た。HeLa細胞をこれらのベクターで又はこれらのベクターの組合せでトランスフェクトして、NbSyn1aまたはNbSyn2に融合したGFPまたはmKO1を使用して前記発現を検出し前記EPEAタグ化タンパク質の位置を特定することが可能かどうかを調べた。図13は、mKO1またはGFPに融合したNbSyn2またはNbSyn1aでトランスフェクトされた細胞が前記細胞において均一に着色していることを示している。Rev-GAGAGYQDYEPEAまたはRev-GAGAEPEAと、mKO1またはGFPに融合したNbSyn2またはNbSyn1aとで二重トランスフェクトされた細胞は、核において、より濃い色を示す。野生型Revは細胞の核と細胞質との間を往来し、前記タンパク質の大部分は核内に局在することが公知であるPerkinsら,1989。したがって、前記蛍光ナノボディ融合体および前記EPEAタグ化Revタンパク質は二重トランスフェクト化細胞の核内に共局在し、このことは、GYQDYEPEAおよびEPEAタグの両方が、たとえ細胞の核内であっても、NbSyn2またはNbSyn1a融合体によりインビボで認識されることを証明している図13。実施例11.二価ナノボディを使用するインビトロ検出の感度の改良前記EPEAタグがハイスループット用途において機能することは実施例9から明らかである。ELISAの感度を改良するために、biNbSyn2配列番号68と称される、NbSyn2の二価形態を構築した。この目的のために、NbSyn2遺伝子を増幅し、それを、両方のNbSyn2配列の間にGGGGSGGGS配列番号69リンカーを含有する二価構築物として、ファージ提示ベクターpMES4内にクローニングした。biNbSyn2の発現、精製およびアルカリホスファターゼに対するコンジュゲート化は、実施例の材料および方法に記載されているとおりに行った。一価NbSyn2を二価biNbSyn2と比較するために、ELISAを以下のとおりに行った。抗原Nb458-gaaEPEAを種々の濃度で96ウェルプレート上にコートし、プレートをブロッキングした。前記NbSyn2-APコンジュゲートまたは前記biNbSyn2-APコンジュゲートで検出を行った。この実験から、biNbSyn2を使用することにより、検出感度が増加することが明らかである図14A、B。実施例12.タグ化膜タンパク質の検出およびアフィニティ精製もう1つの実施例として、タグ化膜タンパク質が検出されアフィニティ精製により精製されうるかどうかをも試験した。したがって、膜タンパク質CsgGをタグ化し、その発現をウエスタンブロットにより調べ、NbSyn2アフィニティ樹脂を使用してそれを部分精製した。pTrc99apMC2;Robinsonら,2006においてtrcプロモーターの後に自身の天然RBSと共にクローニングされた大腸菌E.coliUTI89CsgGを、C末端EPEAアフィニティタグを含むように修飾した。SLIM部位特異的連結非依存的突然変異誘発;Chiuら,2004法を用いて、材料および方法に詳細に記載されているとおりに、このC末端Hisタグを、GGEPEAをコードする配列配列番号70で置換した。大腸菌E.coli細胞の小規模培養を成長させ、IPTGを加えてEPEAタグ化CsgG配列番号72の産生を誘導した。前記CsgGタンパク質の存在を証明するために、この構築物の、4つの個々のクローン上で、ウエスタンブロットを行った。適切な高さで泳動している明らかなバンドを検出することができた図15。前記EPEAタグ化CsgGの、より大規模な製造のために、前記プラスミドをBL21細胞に形質転換した。材料および方法に記載されているとおりに、細胞膜を調製した。最後に、前記膜を1n-ドデシルβ-D-マルトシドDDM中、一晩にわたって可溶化し、前記可溶化物質を、実施例4に記載されているとおりセファロース-ビーズに架橋されたNbSyn2を含有する小さなカラム上で移動させた。前記ビーズを25mMTrispH8、1mMDTT、0.02DDM、1C8E4、5mMLDAOで洗浄した。小さな合成NH2-EA-COOHペプチド配列番号71での溶出の後、前記膜タンパク質の明らかな富化を認めることが可能であった。このことは、1界面活性剤溶液からのEPEAタグ化膜タンパク質の捕捉が可能であることを示している図16。実施例に関する材料および方法全ての制限酵素、T4DNAリガーゼはFermentasから購入した。細菌株およびプラスミド使用した大腸菌Escherichiacoli株はTG1:supEthi-1Δlac-proABΔmcrB-hsdSM5rk-mk-[F’traD36proABlaclqZDM15]、Top10[mcrADmrr-hsdRMS-mcrBCφ80lacZΔM15ΔlacX74deoRrecA1araD139Δara-leu7697galUgalKrpsL=StrRendA1nupG]Invitrogen,Basel,Switzerland、WK6[Δlac-proAB、galE、strA/F’lacIq、lacZΔM15、proAB]ZellFritz,1987およびBL21細胞Invitrogenであった。プラスミドpHEN4Ghahroudiら,1997、pHEN6Lauwereysら,1998、pMES4genbankGQ907248、pBadMycHisInvitrogen、pcDNA3.1.InvitrogenおよびpMC2Robinsonら,2006を使用した。α-シヌクレインに対するナノボディの免疫化、単離、発現および精製ヒトコブラクダ1をα-シヌクレインで皮下に6週間で6回免疫化した。もう1頭のヒトコブラクダ2をα-シヌクレインAla53Thrおよびβ-シヌクレインで免疫化した。両方の動物から、ChomczynskiおよびSacchi1987に記載されているとおりに、約107個のリンパ球から全RNAを単離した。dN6プライマーおよびsuperscriptRTを製造業者Invitrogenの説明に従い使用して、第1鎖cDNA合成を行った。ヒトコブラクダ1から、VHH遺伝子をコードする遺伝子断片を、既に記載されているとおりにConradら,2001、特異的プライマーを使用するPCRにより増幅した。ネスティッドPCRのために、フレームワーク1においてアニールする1つのプライマー5’-GATGTGCAGCTG-CAGGAGTCTGGRGGAGG-3’配列番号43、および重鎖ヒトコブラクダ免疫グロブリンConradら,2003の重鎖の種々のヒンジ領域においてアニールする3つの他のプライマー5’-GTAGCGGCCGCTGGGGTCTTCGGGGTGGT-GCGCTGAGGAGACGGTGACCTGGGT-3’、5’-GTAGCGGCCGCTTGGTTGGGGTATCTTGGGTTCTGAGGAGA-CGGTGACCTGGGT-3’、5’-GTAGCGGCCGCTTACTTCATTCGTTCCTGAGGAGACGGTGA-CCTGGGT-3’配列番号44、45および46を使用した。VHH遺伝子を、NcoIおよびNotI制限酵素を使用してpHEN4ベクターGhahroudiら,1997内にクローニングし、標準的な方法によりTG1細胞genepulser,Biorad内に形質転換した。ヒトコブラクダ2から、VHH遺伝子をコードする遺伝子断片を増幅し、クローニングしたConradら,2001に記載されているとおりに行った。M13K07での重感染の後、両方のライブラリーのVHHレパトワを前記ファージ上で発現させた。第1ライブラリーからのインビトロ選択を、マキシソープmaxisorpマイクロタイターウェルNuncのウェルにおいてα-シヌクレイン10μg/ウェルでコートされた固相上で、または第2ライブラリーに関してα-シヌクレインAla53Thrもしくはβ-シヌクレインでコートされた固相上で行った。結合ファージを100mMトリエチルアミンpH11で溶出した。後続段階、選択された結合物質の再クローニング、発現および精製は、Conradら,2001に記載されているとおりに行った。EPEAタグを使用するライブラリー構築およびファージ提示前記のとおりに、cDNAライブラリーを構築し、全てのVHH遺伝子を増幅した。VHH遺伝子をpMESy2内にクローニングするために、ベクターおよびPCR産物をPstIおよびEco91I制限酵素で消化し、精製し、T4DNAリガーゼで一晩連結した。プライマーRPおよびGIIIを使用するPCRにより、インサートの分析を行った。ヘルパーファージでの重感染の後、前記ライブラリーのVHHレパトワを前記ファージ上で発現させた。マキシソープmaxisorpマイクロタイターウェルNuncのウェルにおいてタンパク質2×5μg/ウェルでコートされた固相上のライブラリーから、特異的結合物質をインビトロで選択した。前記コート化ウェルを100mMトリエチルアミンpH10と共に10分間インキュベートすることにより、ファージを回収し、溶出物ファージを含有するものを、TrisHClpH6.8を加えることにより中和した。この溶出物を、新たに増殖させたTG1細胞に加えた。ついで前記コート化ウェルをTrisHClpH6.8で1回およびPBSで数回洗浄し、新たに増殖させたTG1細胞を前記ウェルに加えて、未溶出ファージを回収した。特異的結合物質に関するコロニースクリーニングを、前記のとおり、NbSyn-APを使用するELISAにより行った。ヘキサヒスチジンタグとEPEAタグとを併せ持つ新たなファージ提示ベクターを以下のとおりに構築した。pMESy4CA3198と称されるを以下のとおりに調製した。プライマーEP177:5’-GTCACCGTCT-CCTCACACCACCATCACCATCACGAACCTGAAGCCTAGTACCC-3’配列番号47およびEP178:5’-GTACGGGTACTAG-GCTTCAGGTTCGTGATGGTGATGGTGGTGTGAGGAGACG-3’配列番号48を50μMの濃度で互いに混合した。両方のプライマーを水浴中で95°Cに加熱し、非常にゆっくりと室温に冷却した。ついで前記プライマーを1μMの濃度に希釈した。BslWIおよびEco91Iで切断された精製されたpMES4の100ngまたは0.034pmolを1.7pmolのプライマーと混合し、T4DNAリガーゼで連結した。WK6大腸菌E.coli細胞を形質転換し、PCRのより分析し、配列決定した。NMR測定全てのNMR実験は、低温プローブを備えたBrukerAvance500MHzまたは700MHz分光計を使用して行った。ついで全てのNMRデータを、NMRpipe72を使用して処理し、前記データの分析のためにプログラムSPARKY73を使用した。14NNbSyn2の存在下または非存在下の標識α-シヌクレインの結合形態の15N-1HHSQC測定および帰属低温プローブを備えたBrukerAvance700MHz装置で、標準的な15N-1HHSQC実験を行った。NbSyn2の小容量の濃縮ストック溶液の滴定により、種々のモル当量の未標識NbSyn20.25、0.5、0.75、1.0、1.25、1.5、1.75、2.0、2.5、3.0、3.25において、15N標識α-シヌクレインのスペクトルを記録した。全ての実験を10mMリン酸バッファーpH7.4中、10°Cで記録した。アミド共鳴ならびにCβおよびCα化学シフトは予め決定されておりDedmonら,2005a;2005b、それらを前記データの更なる解析に使用した。NbSyn2と複合体化しているα-シヌクレイン共鳴の化学シフトを、一連の標準的な3D実験CBCACONHおよびHNCACBを用いて帰属した。各3D実験の実験と実験との間およびそれらの後、15N-1HHSQCスペクトルを記録することにより、サンプルの完全性の検査を行った。14NNbSyn2の存在下または非存在下の15N13C標識α-シヌクレインの13C-15NCON測定13C-15NCON実験は残基nの13Cカルボニル化学シフトを残基n1の15N化学シフトと相関させるものであり、前記実験を、既に記載されているBermelら,2006とおりに行った。前記スペクトルにおける全ての交差ピークの帰属はBermelら,2006から得た。合わせて2つのCONスペクトルを、15N13C標識α-シヌクレインの遊離体および1当量の14NNbSyn2の添加後のものに関して記録した。前記スペクトルは、低温プローブを備えた500MHzBrukerAvance分光計で記録した。サンプルバッファーは10mMリン酸バッファーpH7.4であり、温度は283Kに設定した。結合形態のα-シヌクレインのCON交差ピークの帰属は、結合α-シヌクレインに関する帰属15N-1HHSQCスペクトルにおける対応ピークに関する15N化学シフトを比較することにより得た。完全長α-シヌクレインおよびα-シヌクレインのペプチド断片に結合した15N13C標識NbSyn2の15N-1HHSQC測定および帰属本発明者らはNbSyn2のバックボーン共鳴の帰属を報告しているVuchelenら,2009。α-シヌクレインに結合した20mMリン酸バッファーpH7.4中の0.3mMの15N13C標識NbSyn2のサンプルのバックボーン帰属を、低温プローブを備えたBrukerAvance700MHz分光計を使用するHNCA実験により得た。完全長14Nα-シヌクレインおよび14N12-残基ペプチドN-SEEGYQDYEPEA-CGenemedSynthesis,Inc,NewYorkの滴定を20mMリン酸バッファーpH7.4中の0.3mMの15N標識NbSyn2で298および283Kで行った。等温熱量測定MCS-ITC熱量計MicroCal,LLC,Northampton,MA,USAを使用して、熱量測定を記録した。75μMの濃度の273μlのNbSyn2の溶液を10μlのアリコートにおいて、1.4mlの5μMα-シヌクレインを含有する熱量測定セル中に滴定した。測定前に、10mMリン酸塩、150mM塩化ナトリウムpH7.4を含有する全く同じバッファー中で両方のタンパク質を透析した。所望の温度で4分ごとに各注入を行った。バッファーのみを含有するサンプルセルにおけるNbSyn2の滴定を、解析前に実際の結合実験から差し引いた。Microcal解析ソフトウェアOrigin7.0を1:1結合モデルで使用して、熱力学的解析を行った。ΔHの温度依存性は、ΔCp=δΔH/δT関係により、ΔCpの計算を可能にした。ΔHへのプロトン化の寄与を、10mMTris-HCLバッファー100mMNaClpH7.4を使用して評価した。タグ化GFPのクローニング、大腸菌E.coliにおける発現および精製TakaraExTaqポリメラーゼTAKARABIOINCを使用するPCRにより、4つの異なるタグをgfp遺伝子に結合させた。同じ特異的プライマーEP1245’TAATCATGAGCAAAGGAGAAGAACTTTTCAC3’配列番号67を全ての構築物において使用した。それは前記遺伝子のN末端においてアニールする。C末端において種々のタグのコード配列を融合させるために、種々のプライマーを使用した。GYQDYEPEAには、プライマーEP1265’-TTCGAATT-CATTACGCTTCCGGTTCATAATCCTGATATCCTTTGTAGAGCTCATCCATGC3’配列番号49を使用し、YQDYEPEAには、プライマーEP1275’-TTCGAATTCATTACGCTTCCGGTTCATAATCCTGATATTTGTAGAGCT-CATCCATGCC-3’配列番号50を使用し、QDYEPEAには、プライマーEP1285’-TTCGAATTCATTACGCTTCCGGTTCATAAT-CCTGTTTGTAGAGCTCATCCATGCC-3’配列番号51を使用した。増幅条件は94°Cで4分、28回94°Cで40秒、50°Cで40秒、72°Cで1分および72°Cで10分であった。種々のエピトープタグを有するGFP融合分子をコードする増幅gfp融合体をBspHIおよびEcoRIで切断した。前記PCR産物を、NcoIおよびEcoRIで開裂されたpBADmycHisベクター内に連結した。最後に、前記連結産物を大腸菌E.coliTOP10内に形質転換した。GYQDYEPEタグを有するGFPを構築するために、1μlの前記EP124-EP126増幅GFP断片を、プライマーEP124およびEP1295’TTCGAATTCATTATTCCGGTTCATAATCCTG3’配列番号52を使用する更なるPCRのための鋳型として使用した。前記増幅PCR産物を、前記のとおり、pBADmycHisベクターにクローニングした。様々にタグ化されたGFP融合体を発現させるために、大腸菌E.coli細胞培養をOD600=0.7の細胞密度で0.02アラビノースの添加により誘導し、37°Cで更に一晩インキュベートした。330mlのLB培養からの細胞を遠心分離10分間、4000rpm、4°Cにより回収し、ペレットを、1mMPMSTを含有する20mlの50mMTris-HClpH7.5に再懸濁させた。C5EmulsiFlexHighPressureHomogeniser86-001AVESTIN,Germanyにより細胞を細胞溶解させた。不溶性物質を遠心分離30分間、4000rpm、4°Cによりペレット化し、上清細胞質画分を集めた。ヘキサヒスチジンタグ化Hisタグ化NbSyn2と複合体化しているタグ化GFPを精製するために、Hisタグ化NbSyn2のペリプラズム画分を各タグ化GFPの1つの細胞質画分と混合した。前記のとおりにIMACを行った。NbSyn2-GFPタグ化融合複合体を1Mイミダゾールで溶出した。VHH-EPEAタグ化融合体のクローニング、大腸菌E.coliにおける発現および精製1ngのpMES4a上で、pMESy1CA2857を構築するためにEP1385’-ACCCAGGTCACCGTCTCCTCAGGGTATCAAGACTACGAACCTGAAGCCTAGTACCCGTACGACGT配列番号53およびFP5’-CGCCAGGGTTTTCCCAGTCACGAC-3’配列番号54を使用して、そしてpMESy2CA2741を構築するためにプライマーEP1395’-ACCCAGGTCACCGTCTCCTCAGGGGCAGCGGAACCTGAAGCCTAGTACCCGTACGACGTTC-3’配列番号55およびFPを使用して、TakaraExTaqポリメラーゼでPCRを行った。増幅条件は94°Cで4分、28回94°Cで40秒、55°Cで40秒、72°Cで1分および72°Cで10分であった。両方のPCR産物およびpMES4ベクターをBamHIおよびEco91Iで切断し、精製した。50ngのPCR産物への100ngのベクターの、T4DNAポリメラーゼでの連結を、4°Cで一晩行った。前記混合物をWK6細胞内に形質転換し、37°Cで一晩増殖させた。プライマーMP575’-TTATGCTTCCGGCTCGTATG-3’配列番号56およびGIII5’-CCACAGACAGCCCTCATAG-3’配列番号57を使用するPCRならびにSpeI消化により分析を行った。クローンを配列決定し、適切なものから、DNAを調製したQiagen。Nb458を、プライマーRPおよびプライマーEP1015’-TGAGGAGACGGTGACCTGGGT-3’配列番号58を使用して、前記と同じ増幅条件で増幅し、PstIおよびEco9I制限酵素を使用してpMESy1CA2857またはpMESy2CA2741ベクター内にクローニングした。インサートの分析を、プライマーRPおよびGIIIを使用するPCRにより行った。Conradら,2001に記載されているとおりに、発現を行った。pMESy1内のNb458はGYQDYEPEAタグの配列に融合され、CA2944と称される。一方、pMESy2においては、それはgaaEPEAタグを有し、CA2945と称される。NbSyn2アフィニティカラム精製精製されたHisタグ化NbSyn2をCNBr活性化セファロースGEHealthcareLifescienceに、前記製造業者の説明に従い結合させた。カラムを50mMTrisHClpH7.5で平衡化した。タグ化融合体GFPまたはVHHのライセートをビーズ上に1時間接触させた。前記カラムを10カラム体積cvの50mMTrisHClpH7.5で洗浄し、全てpH7.5の追加化合物実施例を参照されたいの存在下の10cvの50mMTrisHClで溶出を行った。最後の実験においては、溶出バッファーは1Mまたは2MNaClの存在下の50mMTrisHClpH7.5、0.5Mアジピン酸の存在下の50mMTrisHClpH7.5、または750μMのペプチドGYQDYEPEAの存在下の50mMTris-HClpH7.5であった。Hisタグ化NbSyn2を使用する固相ELISAマキシソルブMaxisorb96ウェルプレートNuncをNb458-gaaEPEAまたはNb458-GYQDYEPEA調製物で、炭酸水素ナトリウムバッファーpH8.2中、2μg/mlで4°Cで一晩コートした。前記ウェル内の残留タンパク質結合部位をPBS中の2乳で室温で2時間ブロッキングした。NbSyn2-His6タグを0.2乳と共にPBS中の2μg/mlで加えた。マウス抗ヒスチジン-タグSerotecを使用して、NbSyn2ナノボディの検出を行った。アルカリホスファターゼ抗マウスIgGコンジュゲートSigmaを使用して、前記マウス抗his抗体の後続検出を行った。酵素基質p-ニトロフェニルホスファートの添加の15分後に405nmにおける吸光度を測定した。アルカリホスファターゼにコンジュゲート化されたNbSyn2を使用する固相ELISA、ウエスタンブロットPBS中の0.5mgのHisタグ化NbSyn2を、HarlowLane1988に記載されているとおり、0.5mlの最終体積中の2.5mgのアルカリホスファターゼにコンジュゲート化した。マキシソルブMaxisorb96ウェルプレートNuncを、炭酸水素ナトリウムバッファーpH8.2中の2μg/mlのタンパク質調製物で4°Cで一晩コートした。SDS-PAGEおよびウエスタンブロットを標準的なプロトコールに従い行った。前記ウェル内または膜上の残留タンパク質結合部位をPBS中の2乳で室温で2時間ブロッキングした。前記タグの検出を1/1000の希釈度のNbSyn2-APコンジュゲートで行った。ELISAのために、酵素基質p-ニトロフェニルホスファートの添加の15~分後に405nmの吸光度を測定した。ウエスタンのために、NBT/BCIP基質Rocheを、前記製造業者が記載しているとおりに使用した。NbSyn2-ペプチド複合体の結晶化合成ペプチド配列NH2-GYQDYEPEA-COOHBIO-SYNTHESIS,INC.,Texasと複合体化しているNbSyn2の結晶化を、結晶化ロボットPhoenixArtRobbinsInstrumentsおよびシッティングドロップsittingdrop蒸気拡散アッセイを用いて行った。まず、133μlの10mg/mlのNbSyn2を15μlのペプチド20mg/mlと混合した後、JBClassic1-4G10スクリーンJenaBiosciencesに分散させた。100nlの滴を100nlの沈殿溶液と混合した。以下の条件下で結晶を得た:25w/vPEG6000、100mMHEPESpH7.5および100mMLiCl。ついで結晶を集め、凍結保護溶液25w/vPEG6000、100mMHEPESpH7.5および100mMLiClおよび10PEG400に移し、データ収集のために液体窒素中で瞬間冷凍した。データ収集および構造解析NbSyn2-ペプチド複合体の凍結結晶の回折パターンを、DeutschesElektronenSynchrotronDESYHamburg,Germanyを使用して、EuropeanMolecularBiologyLaboratoryEMBLにおいて、MAR555検出器を備えたX11ビーム線で得た。Mosfilm65およびPointlessを使用してデータを処理し、Scalaを使用して空間群を決定し、データをそれぞれ基準化scaleし合体させた。プログラムPhaser66、およびNbSyn2に関するモデル、すなわち、pbdエントリー1HCV67を使用する分子置換を用いて、構造因子に関連した相情報を得た。プログラムArp/Warp68およびRefmac569を使用して、モデル構築および精密化を行った。電子密度地図を解釈するため、および前記モデルの精密化のために、グラフィックスプログラムCoot70を使用した。NbSyn2:α-シヌクレイン複合体の形成の際の溶媒接近可能表面積ASAにおける変化を、ウェブベースサーバーPROTORP71を使用して計算した。HeLa細胞内での発現のための長いタグGYQDYEPEAおよび短いタグEPEAのクローニングTakaraExTaqポリメラーゼTAKARABIOINCを使用するPCRにより、2つの異なるタグGYQDYEPEAおよびEPEAをC末端においてRevに融合させた。GYQDYEPEAのDNA配列にC末端において融合されたrev遺伝子を増幅するために、プライマーT75’-ATTAATACGACTCACTATAGG-3’配列番号59およびプライマーEP1365’-TCGAGCGGCCGCTTAGGCTTCAGGTTCGTAGTCTTGATACCCTGAAGCTCCTGCACCATTCTC-3’配列番号60を使用して、DirkDaelemansにより快く贈呈されたpcDNARev-mKO1上でPCRを行った。EPEAタグをRevに融合させるために、プライマーT7およびEP1765’-TCGAGCGGCCGCTTAGGCTTCAGGTTCAGCTCCTGCACCATTCTC-3’配列番号61を使用した。増幅条件は94°Cで2分、25回94°Cで30秒、52°Cで30秒、72°Cで1分および72°Cで10分であった。前記増幅DNA断片をKpnIおよびNotIで切断し、pcDNA3.1ベクター内に連結した。前記連結産物を大腸菌E.coliTop10内にエレクトロポレーションした。PCRおよび配列分析によりクローンを分析した。また、同時に、前記のとおりに両方のタグをGFPに融合させた。前記融合は、それをGYQDYEPEAに融合させるためにプライマーEP1805’-GCTTGGTACCTCATGAGCAAAGGAGAAGAAC-3’配列番号62およびプライマーEP1265’-TTCGAATTCATTACGCT-TCCGGTTCATAATCCTGATATCCTTTGTAGAGCTCATCCATGC-3’配列番号63を使用して、そしてGFPをEPEAに融合させるためにプライマーEP180およびプライマーEP1815’-TTCGAATTCATTACGCTTCCGGTTCT-GCGGCTCCTTTGTAGA-GCTCATCCATGCC-3’配列番号64を使用して行った。前記増幅DNA断片をKpnIおよびEcoRIで切断し、pcDNA3.1ベクター内に連結した。ついで前記連結産物を大腸菌E.coliTop10内にエレクトロポレーションし、クローンをPCRおよび配列分析により分析した。HeLa細胞のトランスフェクションHeLaヒト上皮細胞を、標準的な方法を用いて、10ウシ胎児血清を含有するDMEM培地内でコンフルエントになるまで維持した。HeLaにおけるプラスミドDNAのトランスフェクションのために、細胞をトリプシン/EDTA処理により集め、計数し、ガラス底マイクロウェルディッシュMatTekcorporation上でプレーティングした。製造業者のマニュアルに従いトランスフェクションを行った。4×105個の細胞を35mmディッシュ内に播いた。1.2μgのDNA、または2つの異なるプラスミドを2回コトランスフェクトする場合には1μgのDNAを、4.5μlのTransfectQiagenValencia,Californiaと混合し、前記細胞上に滴下し、一晩インキュベートした。共焦点顕微鏡法トランスフェクト化HeLa細胞を、HCXPLAPO×63NA1.2水中浸漬対物拡大を用いて、AF6000顕微鏡およびAOBSを備えたレーザー走査SP5共焦点顕微鏡LeicaMicrosystemsでイメージングした。励起のために488nm線を使用して、ArレーザーでGFPをモニターし、492~570nmで発光を検出した。励起のためにDPSS-561nmレーザーを使用して、mKusabiraオレンジ蛍光タンパク質mKOをイメージングし、570~675nmで発光を検出した。二価biNbSyn2のクローニング、大腸菌E.coli内での発現および精製2ngのpHen6cNbSyn2ベクターEP358上で、kapaTaqポリメラーゼで2つの異なるPCRを行った。前記PCRにおいては、NbSyn2遺伝子を増幅するために、1回は、プライマーSM175’-CGCGGCCCAGCCGGCCATGGCT-GATGTGCAGCTGGTG-GAGTCTGG-3’配列番号73およびプライマーVHH1-リバース-5GS-BamHI5’-AGTAGGATCCGCCACCTCCTGAGGAGACCGTGACCTGGGT-3’配列番号74を使用し、1回は、プライマーVHH2-フォワード-4GS-BamHI5’-TCTTGGATCCGGCGGAGGTAGTCAGGTGCAGCTGCAGGAGTCTGGGGGAGG-3’配列番号75およびプライマーVHH2-リバース-TVSS-BsteII5’-TGAGGAGACGGTGACCTGGGT-3’配列番号76を使用した。増幅条件は94°Cで2分、28回94°Cで40秒、55°Cで40秒、72°Cで1分および72°Cで10分であった。プライマーSM17およびVHH1-リバース-5GS-BamHIを使用することにより得られたPCR産物をNcoIおよびBamHIで切断し、プライマーVHH2-フォワード-4GS-BamHIおよびVHH2-リバース-TVSS-BsteIIを使用することにより得られた第2のPCR産物をBamHIおよびEco91Iで切断した。pMES4ベクターをNcoIおよびBamHIおよびEco91Iで切断した。全ての消化物を精製し、DNA濃度を測定した。30ngの両方のPCR産物への100ngのベクターの、T4DNAポリメラーゼでの3点連結を、10μl中で室温で2時間行った。前記混合物を希釈し、XbaIで切断して、自己連結ベクターを除去した。前記消化物を精製し、WK6細胞内に形質転換し、37°Cで一晩増殖させた。プライマーMP575’-TTATGCTTCCGGCTCGTATG-3’配列番号56およびGIII5’-CCACAGACAGCCCTCATAG-3’配列番号57を使用するPCRならびにBamHI消化により、分析を行った。BamHI部位を含有する適切なPCR断片サイズを有するクローンから前記PCR断片を配列決定し、適切なものから、プラスミドDNAを調製しQiagen、pMES4biNbSyn2CA4394と命名した。Conradら,2001に記載されているとおり、発現および精製を行った。IMAC精製後、前記サンプルを濃縮し、分取用スーパーデックスsuperdex75サイズ排除カラム上で移動させて、前記二価biNbSyn2を混入物または分解産物から分離した。アルカリホスファターゼにコンジュゲート化されたbiNbSyn2を使用する固相ELISAPBS中の0.66mgのHisタグ化biNbSyn2を1.7mgのアルカリホスファターゼにコンジュゲート化し、並行実験において、0.33mgの一価NbSyn2を1.7mgのアルカリホスファターゼにコンジュゲート化した。どちらの場合も、最終体積は0.33mlであり、前記コンジュゲート化は、HarlowLane1988に記載されているとおりに行った。マキシソルブMaxisorb96ウェルプレートNuncを、炭酸水素ナトリウムバッファーpH8.2中、1μg/mlまたは0.1μg/mlの濃度の100μlのタンパク質調製物で4°Cで一晩コートした。前記ウェル内の残留タンパク質結合部位をPBS中の2乳で室温で2時間ブロッキングした。前記タグの検出を、NbSyn2-APコンジュゲートおよびbiNbSyn2-APの両方の1/250~1/4000の希釈度で行った。ELISAのために、酵素基質p-ニトロフェニルホスファートの添加の60分後および一晩のインキュベーションの後、405nmにおける吸光度を測定した。CsgG膜タンパク質のクローニング、大腸菌E.coli内での発現およびその検出/精製CsgGのC末端Hisタグを、GGEPEAをコードする配列で置換するために、以下のプライマー:5’-GGCGGCGAACCGGAAGCGTGACTGCAGGCATGCAAGCTTGGCT-3’配列番号77、5’-TGACTGCAGGC-ATGCAAGCTTGGCT-3’配列番号78、5’-CGCTTCCGGTTCGCCGCCATGGTGATGGTGATGGTGGGATTCC-3’配列番号79、5’-ATGGTGATGGTGATGGTGGGATTCC3’配列番号80を使用して、pMC2プラスミドをSLIM法Chiuら,2004において使用した。PCRおよび配列分析は適切な置換を証明した。CsgGタンパク質の発現を確認するために、同じ構築物の、4つの異なるクローンを拾い、25mlの大腸菌E.coli培養を成長させ、誘導した。細胞を集め、SDS-PAGEにより分離し、ニトロセルロース膜に移した。前記ブロットを2乳でブロッキングし、20mlのPBS/Tweenで5回洗浄した。NbSyn2-APコンジュゲート一価をPBS中の0,2乳中で500倍希釈し、1時間振とうした。前記ブロットを更に5回洗浄し、NBT/BCIP基質Rocheで前記製造業者の説明のとおりに現像した。発現されたEPEAタグ化CsgGを精製するために、110gの凍結細胞ペレットを330mlの50mMTris、150mMNaCl、1mMDTT、1mMEDTApH8.0に再懸濁させた。ペレット1g当たり20μgのDNアーゼおよびバッファー1ml当たり0.1mgのリゾチームを加えた。細胞をフレンチプレスにより細胞溶解し、細胞残渣を短い遠心分離段階7,500g、4°Cで12分間により除去した。ついで前記上清を高速で遠心分離100000g、4°Cで50分間して、膜を取り出した。0.5サルコシンを含有する100mlの25mMTris、150mMNaCl、1mMDTT、1mMEDTApH8.0中で膜をホモジナイズした。前記懸濁液を高速で遠心分離100000g、4°Cで50分間し、ペレット=外膜を集めた。ホモジナイザーを使用して、前記ペレットを、2mMLDAOを含有する100mlの25mMTris、150mMNaCl、1mMDTT、1mMEDTApH8.0に再懸濁させた。遠心分離後、前記ペレット膜を、0.002DDMを含有する50mlの25mMTris、150mMNaCl、1mMDTT、1mMEDTApH8.0にそれを再懸濁させることにより、洗浄した。懸濁液を遠心分離100000g、4°Cで50分間して、外膜を集めた。これらを100mlの25mMTris、150mMNaCl、1mMDTTおよび1DDMに再懸濁させ、4°Cで一晩振とうして前記膜を可溶化した。最後の1つの遠心分離段階100000g、4°Cで50分間を行って、不溶性部分を除去した。実施例4に記載されているとおりにセファロース-ビーズに架橋された1mlのCNBr-NbSyn2を含有する小さなカラム内で上清を移動させた。前記ビーズを5mlの25mMTrispH8、1mMDTT、0.02DDM、1C8E4、5mMLDAOで洗浄した。750μMの小さな合成NH2-EA-COOHペプチドを含有する1mlの25mMTrispH8、150mMNaCl、1mMDTT、0.02DDMで結合タンパク質の溶出を2回行った。"