寄託コードCCTCCM2011330であるキシロオリゴ糖の組成を制御可能な耐アルカリ性バチルスハロデュランス菌。請求項1記載の耐アルカリ性バチルスハロデュランス菌において、該耐アルカリ性バチルスハロデュランス菌は2種類の耐熱耐アルカリ性キシラナーゼを分泌でき、該耐熱耐アルカリ性キシラナーゼはキシラナーゼxyn45及びキシラナーゼxyn23とされることを特徴とする、耐アルカリ性バチルスハロデュランス菌。請求項1記載の耐アルカリ性バチルスハロデュランス菌で組成制御可能なキシロオリゴ糖を製造する方法において、そのステップは、1植物材料で高pH値の下で耐アルカリ性バチルスハロデュランス菌を培養するステップ、2該耐アルカリ性バチルスハロデュランス菌中よりキシラナーゼxyn45とキシラナーゼxyn23を包含する酵素組合せを取得するステップ、3該酵素組合せとキシラン原料を酵素反応させるステップ、4キシロース、キシロバイオース、キシロトリオース、重合度4以上のキシラン及びそれらの任意の組合せで組成される群より選択したキシロオリゴ糖を取得するステップ、を包含することを特徴とする方法。請求項3記載の方法において、1のステップの該植物材料は、カバ材、トウモロコシの穂軸、フスマ、サトウキビバガス、藁、アルカリ処理フスマで組成される群より選択することを特徴とする方法。請求項3記載の方法において、1のステップの該高pH値の範囲は8~11とすることを特徴とする方法。請求項3記載の方法において、2のステップの該酵素組合せは該耐アルカリ性バチルスハロデュランス菌を遠心処理して上澄み液を取り、該上澄み液を硫酸アンモニウムで沈殿させた後に再懸濁させ並びに透析して得た液体であることを特徴とする方法。請求項3記載の方法において、3のステップの該キシラン原料はカバ材、トウモロコシの穂軸、フスマ、サトウキビバガス、藁、アルカリ処理フスマで組成した群より選択することを特徴とする方法。請求項3又は7記載の方法において、3のステップの該キシラン原料はトウモロコシの穂軸とすることを特徴とする方法。請求項3記載の方法において、3のステップの該酵素反応の条件は摂氏30~80度、pH4~11とすることを特徴とする方法。請求項3記載の方法において、該植物材料をアルカリ処理したフスマとする時、該キシロオリゴ糖中のキシロバイオースの比率は32以上であることを特徴とする方法。請求項3記載の方法において、該植物材料をトウモロコシの穂軸とする時、該キシロオリゴ糖中のキシロバイオースの比率は27以上であることを特徴とする方法。請求項10記載の方法において、該酵素反応の時間を4時間内で終了する時、該キシロオリゴ糖中のキシロトリオースの比率は8.6以上であることを特徴とする方法。前述の周知技術の問題を解決するため、本発明の目的は、一種の、キシロオリゴ糖の組成を制御可能なバチルスハロデュランス菌を提供することにあり、それはすでに2011年9月26日に中華人民共和国典型培養物保藏中心に寄託され、その寄託コードはCCTCCM2011330である。この耐アルカリ性バチルスハロデュランス菌は二種類の耐熱耐アルカリ性キシラナーゼを分泌し得て、該耐熱耐アルカリ性キシラナーゼはキシラナーゼxyn45或いはキシラナーゼxyn23とされる。本発明は前述の耐アルカリ性バチルスハロデュランス菌より組成制御可能なキシロオリゴ糖を製造する方法は、そのステップが、植物材料を使用し高pH値下で耐アルカリ性バチルスハロデュランス菌を培養し、該耐アルカリ性バチルスハロデュランス菌中より酵素組合せを取得し、該酵素組合せはキシラナーゼxyn45及びキシラナーゼxyn23を包含する。該酵素組合せとキシラン原料を酵素反応させ、キシロオリゴ糖を取得し、該キシロオリゴ糖は、キシロール、キシロバイオース、キシロトリオース、重合度4以上のキシラン及びその任意の組合せで組成された群より選択される。該植物材料はカバ材、トウモロコシの穂軸、フスマ、サトウキビバガス、藁、アルカリ処理フスマで組成された群より選択される。該高pH値の範囲は、8~11とされる。該酵素組合せは、本実施例中では酵素液とされ、それは該耐アルカリ性バチルスハロデュランス菌を遠心処理して上澄み液を得て、該上澄み液を硫酸アンモニウムで沈殿させた後に、再懸濁させ並びに透析して得られた液体である。該キシラン原料は、トウモロコシの穂軸とされる。該酵素反応の条件は、摂氏30~80度、pH4~11とされる。該植物材料がアルカリ処理されたフスマとされる時、該キシロオリゴ糖中のキシロバイオースの比率は32以上とされる。該植物材料がトウモロコシの穂軸とされる時、該キシロオリゴ糖中のキシロバイオースの比率は27以上とされる。また、酵素反応時間が4時間以内で終わる時、該キシロオリゴ糖中のキシロトリオースの比率は8.6以上となる。本発明の方法により製造されたキシロオリゴ糖は抗細菌、抗黴菌及び腸内プロバイオティクスの生長を助けるという長所のほかに、異なるキシロース数の組成比率を制御できる特色を有し、キシロオリゴ糖のキシロース数比率により異なる種類の乳酸菌保健食品、飲食品中に組み合わせることで、各種のキシロオリゴ糖成分に最大の利用を達成させられる。本発明の技術内容、構造特徴、達成する目的を詳細に説明するため、以下に実施例を挙げて説明する。以下に述べることは、本発明の実施例にすぎず、本発明の実施の範囲を限定するものではなく、本発明の特許請求の範囲に基づきなし得る同等の変化と修飾は、いずれも本発明の権利のカバーする範囲内に属するものとする。本発明は耐アルカリ性バチルスハロデュランス菌寄託コードCCTCCM2011330のエンドキシラナーゼにより異なる組成のキシロオリゴ糖を製造する。本発明で使用する耐アルカリ性バチルスハロデュランス菌は、パルプ工場の廃水処理場でスクリーニングして得られ、大量の耐熱耐アルカリ性キシラナーゼを分泌でき、これらキシラナーゼは、それは二種類の活性タンパク質を有し、SDS-PAGE分析ゲル片における所在位置は、45kDaと23kDaであり、このためそれぞれxyn45とxyn23と称され、それぞれエンドキシラナーゼに属する。xyn45とxyn23yはそれぞれ第10と第11ファミリーのグリコシルヒドロラーゼに属し、第10ファミリーのグリコシルヒドロラーゼの特性は、分子量が比較的大きく、酸性pI値低pI値に属し、構造が比較的大きく且つ弛緩している。第11ファミリーのグリコシルヒドロラーゼの特性は、分子量が比較的小さく、アルカリ性pI値高pI値に属し、構造が比較的小さく且つ緊密である。xyn45とxyn23は広範なpH値と耐高温の応用範囲を有し、摂氏70度でpH4~11の間でいずれも活性を有する。xyn23はpH7の時に活性が最高の温度は摂氏60度であるが、摂氏70度の時の活性は最大活性の90を有する。xyn45はpH7の時、高活性を示す温度が非常に広く、範囲は摂氏42-75度であり、活性最高の温度は摂氏70度である。総合すると、これら二種類の酵素は摂氏30-80度でいずれも50以上の活性を有し、最良の温度は摂氏72度である。これら二種類の酵素はpH4~11でいずれも60以上の活性を有する。これら二種類のグリコシルヒドロラーゼを単独或いは混合使用すると、いずれもキシランを加水分解して重合度DPが比較的小さいオリゴ糖となすことができ、これにより、キシロオリゴ糖を製造するのに用いることのできる理想的なキシラナーゼである。本発明の実施例では、異なる植物材料で耐アルカリ性バチルスハロデュランス菌のキシラナーゼ分泌を誘導し、比率の異なる二種類のキシラナーゼxyn45とキシラナーゼxyn23を含む酵素組合せを獲る。その後、同じキシラン原料に作用させて、組成の異なるキシロオリゴ糖を獲る。組成の異なるキシロオリゴ糖はその機能性も異なり、既存の技術において、単一酵素を生物触媒とするのとは異なり、すなわち、本発明は異なる誘導材料により酵素組成を調整することで、異なる組成のキシロオリゴ糖を獲得する製造方法である。耐アルカリ性バチルスハロデュランス菌のキシラナーゼ分泌を誘導する植物材料は、キシランを含有する任意の材料、例えば、カバ材、トウモロコシの穂軸、フスマ、サトウキビバガス、藁、アルカリ処理フスマとされ、好ましくは、カバ材、アルカリ処理されたフスマ、トウモロコシの穂軸、最も好ましくはアルカリ処理されたフスマ及びトウモロコシの穂軸とされる。耐アルカリ性バチルスハロデュランス菌の培養基は通常、基礎培養基例えばエマーソン培地或いはバーグミネラル塩培地に、キシランを加えて組成される。キシランは誘導基質とされ、バチルスハロデュランス菌のキシラナーゼ分泌を誘導し、これら二種類の培地キシランを含有しないの組成は以下のとおりである。エマーソン培地は、0.55酵母抽出物、0.5ペプトン、0.02の硫酸マグネシウムMgSO4、0.1のリン酸水素二カリウムK2HPO4で組成され、さらに1Mの水酸化ナトリウムでpH値が10となるように調整される。バーグミネラル塩培地は、0.2の硝酸ナトリウムNaNO3、0.1の酵母抽出物、0.05のリン酸水素二カリウム、0.02の硫酸マグネシウム水和物MgSO47H2O、0.002の塩化マンガンMnCl、0.002の塩化カルシウムCaCl2で組成される。さらに25の炭酸ナトリウムNa2CO3でpH値が10.5となるように調整される。これら二種類の培地に2カバ材キシランを加え、滅菌後に耐アルカリ性バチルスハロデュランス菌を培養し、500ミリリットル三角フラスコで摂氏37度の培養箱中で200rpmで揺らして120時間培養し、遠心分離により得られた上澄み液を硫酸アンモニウムで90の飽和度の下で沈殿させ、13000rpmで遠心分離の後の沈殿物を、0.1mMTris-HClバッファ溶液pH7.0で再懸濁させ、得られた酵素液を薄膜で透析した後、タンパク質ゲル電気泳動SDS-PAGE及び酵素活性電気泳動を実行し、結果を図1に示した。そのうち、Eはエマーソン培地を代表し、Bはバーグミネラル塩培地を代表し、Mはマーカーを代表する。図1から分かるように、これら二種類のカバ材キシランを含有する培地はいずれも耐アルカリ性バチルスハロデュランス菌を誘導して、酵素活性を有するキシラナーゼxyn45とxyn23を分泌させた。ただし、異なる培地を使用すると得られるタンパク質含有量と酵素活性は異なり、カバ材キシラン含有のバーグミネラル塩培地を使用すると、タンパク質濃度05gL、酵素活性摂氏55度で測定が53UmLであった。カバ材キシラン含有のエマーソン培地を使用すると、タンパク質濃度24gL、酵素活性摂氏55度で測定が211UmLであった。明かに、エマーソン培地を使用することで、比較的多くの酵素タンパク質及びキシラナーゼ活性を得られる。さらにエマーソン培地を基礎とし、それぞれ異なるキシラン原料を使用し、すなわち、2トウモロコシの穂軸、フスマ及びアルカリ処理フスマを誘導基質とし、耐アルカリ性バチルスハロデュランス菌を培養してキシラナーゼを分泌させ、得られた酵素液をタンパク質ゲル電気泳動及び酵素活性電気泳動分析した結果を、図2に示した。そのうち、C、W、及びW1はそれぞれトウモロコシの穂軸、フスマ及びアルカリ処理フスマを含むエマーソン培地を代表し、Mは既知の分子量のマーカーとされる。結果は、トウモロコシの穂軸或いはフスマを使用した培地の誘導により得られるキシラナーゼはxyn45がメインであり、xyn23のタンパク質点及び活性はいずれも非常に不明確であり、ただし、アルカリ処理したフスマで誘導して得られたキシラナーゼxyn45とxyn23はいずれもあり、前述のカバ材キシランの培地と比較すると、得られるxyn23はさらに明確である。これらの結果から、異なる植物原料の誘導下で、耐アルカリ性バチルスハロデュランス菌の分泌するキシラナーゼxyn45とxyn23の比率は顕著に異なることが示された。以下に異なる植物材料の誘導下で耐アルカリ性バチルスハロデュランス菌が分泌するキシラナーゼxyn45とxyn23の発生比率を示す。トウモロコシの穂軸で誘導して発生したキシラナーゼxyn45とxyn23の比率は90:10であった。カバ材キシランで誘導して発生したキシラナーゼxyn45とxyn23の比率は70:30であった。フスマで誘導して発生したキシラナーゼxyn45とxyn23の比率は70:30であった。アルカリ処理フスマで誘導して発生したキシラナーゼxyn45とxyn23の比率は50:50であった。前述の二種類のキシラナーゼxyn45とxyn23の組成比率の違いにより、同じキシラン原料に作用させて得られるキシロオリゴ糖製品組成比率も同じでなく、キシラン原料は任意のキシラン含有の材料、例えばカバ材、トウモロコシの穂軸、フスマ、サトウキビバガス、藁、アルカリ処理フスマとされ、好ましくはフスマ及びトウモロコシの穂軸、最も好ましくはトウモロコシの穂軸とされる。以下に実施例一から三を挙げて本発明についてさらに詳しく説明するが、これらの実施例は明細書の内容を支持するためのもので、本発明の範囲を制限するためのものではない。[実施例一A]アルカリ処理したフスマを耐アルカリ性バチルスハロデュランス菌のキシラナーゼ分泌を誘導する材料とする。キシラナーゼの製造:まず耐アルカリ性バチルスハロデュランス菌のキシラナーゼの分泌を誘導する基質を製造する。すなわち、固体-液体比が1対10の方式でフスマと1の水酸化ナゴリウムを混合し、摂氏121度の高圧釜で10分間滅菌し、その後、純水で洗浄してpH7とし、余剰物を乾燥することでアルカリ処理したフスマを獲る。続いて、250ミリリットルの三角フラスコに100ミリリットルのエマーソン培地を入れた。該エマーソン培地は、0.55酵母抽出物、0.5ペプトン、0.02硫酸マグネシウム、及び0.1リン酸水素二カリウムを包含し、さらにpHが10となるように調整されている。2の上述のアルカリ処理したフスマを加え、全体の混合物を、摂氏121度の高圧釜で30分間滅菌する。三角フラスコを室温まで冷却した後、10v/vの耐アルカリ性バチルスハロデュランス菌を接種し、摂氏37度の培養箱で170rpmで振動して4~5日培養する。その後、菌液を13000rpmで摂氏4度で30分間遠心分離し、上澄み液を硫酸アンモニウムで90の飽和度の下で沈殿させ、13000rpmで遠心分離した後の沈殿物を0.1mMのTris-HClバッファ溶液pH7.0で再懸濁させ、透析後に粗酵素液となす。この粗酵素液の単位体積の活性は179U/mL摂氏37度で測定であった。キシランの製造:トウモロコシの穂軸を研磨して15の水酸化ナトリウムNaOHで固体-液体比が1対20の下で、摂氏90度で90分間処理し、得られた上澄み液を酢酸で中和してpH5.0となし、その後、3倍体積の95のエタノールを加えて60分間浸漬させ、得られた沈殿物はキシランである。このキシランを基質とし、前述のようにして得られたキシラナーゼの作用の下で、キシランを分解してキシロオリゴ糖を発生させる。キシラナーゼの反応でキシロオリゴ糖を製造する条件:基質用量は2w/v、酵素用量8.95U/mL、反応温度は摂氏50度、pH8.0。得られた製品をHPLC分析した。そのうち、HPLCの機器構造は以下のとおりである。カラムはBioRadcolumnAminexHPX87H、カラム温度は摂氏65度、検出器は屈折率検出器とされる。移動相は5mM硫酸H2SO4、流速は0.6ml/minとされる。図3はキシランとキシラナーゼ反応前の基質中の水可溶性成分及び反応後の溶液中の製品のHPLC分析スペクトルであり、図中、A~Dのスペクトルはそれぞれキシランとキシラナーゼの反応前、反応4時間、反応24時間、反応47時間のスペクトルを代表する。製品組成の時間に伴う変化は下表のとおりである。DP1は非キシロースの単糖アラビノース、ブドウ糖等を代表する。DP>4は重合度が4より大きいキシロオリゴ糖を代表する。反応前の基質の水可溶成分は7.45g/Lとされ、いずれも重合度が4より大きいキシロオリゴ糖成分であり、重合度が3より小さいキシロオリゴ糖の存在は無い。反応後に増加する水可溶性キシロオリゴ糖はキシラナーゼが形成する加水分解物とされ、これにより計算して得られた24時間の転化率キシラナーゼ反応が形成するキシロオリゴ糖生産率は56.4であり、47時間では61.5である。もし、反応前アルカリ処理アルカリ処理で得られる水可溶性キシロオリゴ糖を包含すると、総キシロオリゴ糖生産率は第24時間は93.7とされ、反応47時間後には98.7となる。前述の総キシロオリゴ糖生産率計算方式:基質用量2w/vは20g/Lに相当し、24時間と47時間反応の後のキシロオリゴ糖総量はそれぞれ18.73g/Lと19.74g/Lである。これにより、総キシロオリゴ糖生産率は反応24時間後には18.73/20×100=93.7、反応48時間後には19.74/20×100=98.7である。キシラナーゼ反応の時間に伴う変化はキシロトリオースがまず生産され、その後、キシロバイオース濃度が急速に増加し、キシロトリオースは分解されてキシロバイオースとキシロースになり後期に濃度は下降する。反応24時間の後、各オリゴ糖の比率変化は大きくなくなり、反応は緩慢となる。この結果から分かるように、比較的高い比率のキシロトリオースを得ようとすれば、反応は比較的早く2時間から4時間終了する必要があり、この時、転化率キシロオリゴ糖生産率は少し低いが、平均すると約42.5ある。[実施例一B]実施例一Aの酵素液で、濃度試験を行う。キシラナーゼの製造及びキシランの製造は実施例Aと同じである。キシラナーゼ反応でキシロオリゴ糖を製造する条件:基質用量は2w/v、酵素用量17.5U/mL、反応温度は摂氏50度、pH8.0。得られた製品をHPLC分析した。反応15時間の後、製品組成濃度及び百分率は以下のとおりである。DP1は非キシロースの単糖アラビノース、ブドウ糖等を代表する。DP>4は重合度が4より大きいキシロオリゴ糖を代表する。実施例一Aと比較すると、キシラナーゼ用量は8.95U/mLから17.5U/mLにアップする。これにより反応速度は比較的速くなり、反応15時間後に実施例一Aの反応24時間後の結果に相当する結果が得られた。最終製品は重合度が4より小さいキシロオリゴ糖中、キシロバイオースが絶大な部分32以上を占め、キシロース及びその他の単糖を合わせてもただ5しかなく、キシロトリオースは5~6の間である。[実施例二]トウモロコシの穂軸を耐アルカリ性バチルスハロデュランス菌のキシラナーゼ分泌誘導材料となす。キシラナーゼの製造:250ミリリットルの三角フラスコに100ミリリットルのエマーソン培地を入れる。該エマーソン培地は、0.55酵母抽出物、0.5ペプトン、0.02硫酸マグネシウム、及び0.1リン酸水素二カリウムを包含し、さらにpHが10となるように調整される。2の上述のトウモロコシの穂軸粉末を加え、全体の混合物を、摂氏121度の高圧釜で30分間滅菌する。三角フラスコが室温まで冷却された後、10v/vの耐アルカリ性バチルスハロデュランス菌を接種し、摂氏37度の培養箱で170rpmで振動して4~5日培養する。その後、菌液を13000rpmで摂氏4度で30分間遠心分離し、その上澄み液を硫酸アンモニウムで90の飽和度の下で沈殿させ、13000rpmで遠心分離した後の沈殿物を0.1mMのTris-HClバッファ溶液pH7.0で再懸濁させ、透析後に粗酵素液となす。この粗酵素液の単位体積の活性は128U/mL摂氏37度で測定であった。キシランの製造は実施例一Aと同じである。キシラナーゼの反応でキシロオリゴ糖を製造する条件:基質用量は2w/v、キシラナーゼ用量は17.5U/mL、反応温度は摂氏50度、pH8.0。得られた製品をHPLC分析した。図4はキシランとキシラナーゼ反応前の基質中の水可溶性成分及び15時間反応後の溶液中の製品のHPLC分析スペクトルであり、図中、Aはキシランとキシラナーゼの反応前、Bはキシラナーゼ反応15時間後のスペクトルである。反応15時間の後、製品組成濃度及び百分率は以下のとおりである。第1次実験第2次実験DP1は非キシロースの単糖アラビノース、ブドウ糖等を代表する。DP>4は重合度が4より大きいキシロオリゴ糖を代表する。本実施例から分かるように、トウモロコシの穂軸で培養した耐アルカリ性バチルスハロデュランス菌より得られる酵素液でキシランを分解して得られるキシロオリゴ糖成分は、キシロバイオース比率が比較的低く約27、キシロース及びその他の単糖を合わせると比較的高い約9であり、キシロトリオースは約7を維持する。[実施例三]実施例一の酵素液で、キシラナーゼの耐アルカリ性を試験する。酵素の製造及びキシランの製造は実施例一と同じである。酵素反応でキシロオリゴ糖を製造する条件:基質用量2w/v、酵素用量17.9U/mL、反応温度摂氏50度、pH値はそれぞれ9、10及び11である。得られる製品をHPLCで分析する。反応15時間の後、製品組成濃度及び百分率は以下のとおり。DP1は非キシロースの単糖アラビノース、ブドウ糖等を代表する。DP>4は重合度が4より大きいキシロオリゴ糖を代表する。実施例一Bと比較すると、pH値は高くなり反応速度は遅くなり、これにより転化率は下降する。アルカリ処理したフスマで耐アルカリ性バチルスハロデュランス菌を培養して得られる酵素液は、単糖主にはキシロース比率が比較的低いが、キシロバイオースのキシロトリオースに対する比率は高pH値での反応時に僅かに下降する。本実施例は酵素はアルカリ条件下でもなおキシロオリゴ糖製造の能力を有することを示す。実施例一Aから分かるように、アルカリ処理したフスマをキシラナーゼ発生を誘導する植物材料となす時、時間の増加0~47時間に伴い、キシロースとキシロバイオースの比率は増加し、それぞれ1.59~4.39及び21.79~35.65であり、キシロトリオースの比率は、2時間後の9.58から47時間後の5.31に漸減する。実施例二でトウモロコシの穂軸をキシラナーゼ発生を誘導する植物材料となし、実施例一B中のその他の条件を同じにした結果と比較すると、トウモロコシの穂軸を使用して発生するキシロースの比率は7.10と比較的高く、アルカリ処理したフスマではただ3.62である。トウモロコシの穂軸を使用して発生するキシロバイオースの比率は比較的低く27.47で、アルカリ処理したフスマは32.24である。ゆえに、必要により適当な材料を選択することで、必要なキシロース数のキシロオリゴ糖組成比率を達成でき、並びに実施例三の結果により、酵素はアルカリ性環境下で反応できることを示す。