超広帯域光源から発する光を用いたOCT計測により、ゲルを用いた結晶化法により作製されるタンパク質結晶の観測を行うことを特徴とするタンパク質結晶の観測方法。前記超広帯域光源が、超広帯域スーパーコンティニューム光源であることを特徴とする請求項1に記載のタンパク質結晶の観測方法。前記超広帯域スーパーコンティニューム光源から発する光の中心波長が、0.8μm帯であることを特徴とする請求項2に記載のタンパク質結晶の観測方法。前記タンパク質結晶の観測が、その場計測による観測であることを特徴とする請求項1ないし請求項3のいずれか1項に記載のタンパク質結晶の観測方法。請求項1ないし請求項4のいずれか1項に記載のタンパク質結晶の観測方法を用いて、タンパク質結晶の評価を行うことを特徴とするタンパク質結晶の評価方法。請求項1ないし請求項4のいずれか1項に記載のタンパク質結晶の観測方法を用いて、タンパク質結晶と塩との分別を行うことを特徴とするタンパク質結晶と塩との分別方法。タンパク質と塩とを含有する被測定材料をゲル化してゲル液を作製するゲル液作製工程と、前記ゲル液から前記タンパク質を結晶化させるタンパク質結晶化工程と、前記タンパク質結晶化工程後の前記ゲル液を、超広帯域光源から発する光を用いてOCT計測するOCT計測工程と、前記OCT計測における光信号による情報を抽出することにより、前記タンパク質結晶と前記塩とを分別する分別工程とを備えていることを特徴とするタンパク質結晶と塩との分別方法。前記超広帯域光源が、超広帯域スーパーコンティニューム光源であることを特徴とする請求項7に記載のタンパク質結晶と塩との分別方法。前記超広帯域スーパーコンティニューム光源から発する光の中心波長が、0.8μm帯であることを特徴とする請求項8に記載のタンパク質結晶と塩との分別方法。しかしながら、その一方で、このX線結晶解析に供されるタンパク質結晶の提供に関しては、充分に環境が整っているとは言い難いのが実状である。即ち、精度の高いX線結晶解析を行うためには、良質な単結晶を提供する必要があるが、従来は、タンパク質結晶と塩とを非破壊で分別することができず、迅速な結晶解析を妨げていた。現状では、タンパク質結晶のみを染色する試薬を用いて、塩との分別を行う方法はあるが、染色しないタンパク質結晶があること、染色には数時間を要すること、また、一度染色された結晶は解析に使用することができないなどの問題が残されている。また、従来は、微小結晶や高濁度溶液中の結晶を、デジタルマイクロスコープや高解像度光学顕微鏡を用いて観測しているが、深さ方向の形状観測3次元観測が困難であった。また、高濁度溶液中での結晶観測はより困難であった。また、結晶の成長をリアルタイムに非破壊で高精度に観察する方法がないため、結晶の成長を高精度に制御することができず、良質な単結晶を提供することが困難であった。さらに、結晶化能の具体的な評価系が定まっていないため、結晶化の成功率は20以下に留まり、良質な単結晶を作製する手段を規定することが困難であるという問題もあった。さらに、前記したように、深さ方向の形状観測が困難であったために、解析に供する結晶の成形などのマウント操作について、人の手に委ねざるを得ないという問題もあった。このように、従来は、結晶の成長について、非破壊で、リアルタイムに3次元観測して、結晶の成長を高精度に制御することができないという問題があったため、良質な単結晶を提供することが困難で、前記した装置面での環境の整備を充分に活用することができていなかった。このため、タンパク質結晶の成長過程を、非破壊で、リアルタイムにその場計測によって3次元観測して、結晶の成長を高精度に制御することにより、良質な単結晶の作製を可能とするタンパク質結晶の観測技術が望まれていた。また、このような観測技術を用いたタンパク質結晶の評価技術や、タンパク質と塩との分別技術が望まれていた。本発明者は、上記課題に鑑み、鋭意検討の結果、以下に記載する発明により、上記課題が解決できることを見出し、本発明を完成させるに至った。以下、各請求項の発明を説明する。請求項1に記載の発明は、超広帯域光源から発する光を用いたOCT計測により、ゲルを用いた結晶化法により作製されるタンパク質結晶の観測を行うことを特徴とするタンパク質結晶の観測方法である。本発明者は、タンパク質結晶の成長過程を、非破壊で、リアルタイムにその場計測によって3次元観測する技術として、生体組織等の測定対象を切断せずに生体などの断層画像を取得するOCT計測OpticalCoherenceTomography:光断層計測に着目した。本発明者は、このOCTの理論分解能が、光源の中心波長とスペクトルの帯域幅によって決まるものであるため、超広帯域光源を用いることにより、微小で透明度の高いタンパク質結晶でも超高分解能なイメージが得られると考えた。そして、実験の結果、超広帯域光源を用いることにより、超高分解能のOCT計測が実現でき、大きさ数10μmのタンパク質結晶であっても充分に観測可能であることが分かった。このように、本請求項の発明においては、超広帯域光源から発する光を用いることにより、タンパク質結晶の成長過程を、非破壊で、リアルタイムに3次元観測することができ、観測された情報に基づき、結晶の成長過程を高精度に制御することができるため、良質な単結晶を作製することが可能となる。そして、光信号による情報を適宜抽出することにより、タンパク質結晶と塩、さらには各種反応生成物を識別することができるため、タンパク質結晶を非破壊で、明確に分別することができる。また、光信号による情報を適宜抽出することにより、微小結晶や高濁度溶液中の結晶であっても、充分3次元観測することができる。さらに、計測結果に基づき結晶化能の評価系を確立することができるため、スクリーニングの自動化を図ることが可能となる。そして、結晶の深さ方向の形状評価が可能となることにより、結晶のマウント操作を自動化することも可能となる。また、ゲルを用いた結晶化法においては、結晶中やその周囲にゲルを配置させた場合、ゲルにより、散乱光信号を増強することができるため、より超高分解能、高感度のOCT計測を実現することができ、結晶の成長をより高精度に制御して、より良質な単結晶を作製することができる。即ち、X線を用いてタンパク質結晶を正確に解析するためには、透明なタンパク質結晶であることが好ましい。しかし、透明なタンパク質結晶は、後方散乱光が少ないため、その成長過程を観測することが難しい。本発明者が検討を行ったところ、散乱光信号の増強を図り、結晶の屈折率差によって生じる位相差を抽出することにより、可視化が可能となることが分かった。そして、ゲルを用いた結晶化法の場合、結晶中やその周囲にゲルが配置されることにより、散乱光信号が増強されるため、結晶の屈折率差によって生じる位相差を容易に抽出して、容易に可視化することができ、透明なタンパク質結晶の成長を、容易かつ高精度に制御することができる。なお、超広帯域光源とは、スペクトルの帯域幅が50~1000nmの光を発する光源を指す。具体的には、単一、または複数のSLDスーパールミネッセントダイオードを連結した超広帯域発光ダイオードや超広帯域スーパーコンティニュームSC光源などを挙げることができる。請求項2に記載の発明は、前記超広帯域光源が、超広帯域スーパーコンティニューム光源であることを特徴とする請求項1に記載のタンパク質結晶の観測方法である。前記したように、超広帯域光源を用いることにより、超高分解能なイメージを得ることができるが、より高感度で超高分解能なOCT計測を行うためには、本発明者が特開2008-2815号公報において示している、非線形効果によって超広帯域に広がるスーパーコンティニューム光源SC光源を採用することが好ましく、その内でも、低雑音、高コヒーレンスで、かつガウス型などの単峰で滑らかなスペクトル形状を有する高精度な超広帯域SC光源が好ましいことが分かった。なお、このような高精度な超広帯域SC光源は、そのままでは帯域が広すぎ、帯域が光ファイバで制限されてしまう通常のファイバ型OCTには用いることができないため、ファイバを用いるOCTに合わせて、例えば、スペクトルの帯域幅が100~200nmの光を発する光源が使用される。そして、このような超広帯域SC光源を用いた場合、高感度で超高分解能な計測が可能となると共に、直線偏光を活用した偏光依存性の計測や、非常に広く帯域を広げたときの分光計測、コヒーレンスを生かした位相差計測など高機能な計測が可能となるため、結晶の観測のみならず、その周囲環境の組成や物性などの情報も観測することができる。請求項3に記載の発明は、前記超広帯域スーパーコンティニューム光源から発する光の中心波長が、0.8μm帯であることを特徴とする請求項2に記載のタンパク質結晶の観測方法である。超高分解能、高感度のOCT計測を行うためには、中心波長が0.8μm帯の超広帯域SC光が好ましく、この波長の超広帯域SC光を用いることにより、深さ分解能2μm以下、感度110dB以上の超高分解能、高感度のOCT計測が現実的なものとなる。請求項4に記載の発明は、前記タンパク質結晶の観測が、その場計測による観測であることを特徴とする請求項1ないし請求項3のいずれか1項に記載のタンパク質結晶の観測方法である。前記したように、超広帯域光を用いることにより、タンパク質結晶の成長過程を、非破壊で、リアルタイムに3次元計測することができるため、その場計測による高精度の観測が可能となり、その場計測された情報を適宜フィードバックすることにより、計測結果に基づき結晶化能の評価系を形成したり、スクリーニングを自動化したりすることができる。さらには、このフィードバックに基づいて、結晶の成長過程を適切に制御することにより、良質な単結晶を自動化により作製することも可能となる。そして、結晶の深さ方向の形状評価が可能となることにより、結晶のマウント操作を自動化することも可能となり、結晶の作製からX線結晶解析までの全ての過程を自動化することが望める。請求項5に記載の発明は、請求項1ないし請求項4のいずれか1項に記載のタンパク質結晶の観測方法を用いて、タンパク質結晶の評価を行うことを特徴とするタンパク質結晶の評価方法である。上記のタンパク質結晶の観測方法を用いることにより、高感度で超高分解能な計測が可能となると共に、直線偏光を活用した偏光依存性の計測や、非常に広く帯域を広げたときの分光計測、コヒーレンスを生かした位相差計測など高機能な計測が可能となるため、結晶の周囲環境の組成や物性などの情報も観測することができ、結晶化能の評価系を確立することができる。請求項6に記載の発明は、請求項1ないし請求項4のいずれか1項に記載のタンパク質結晶の観測方法を用いて、タンパク質結晶と塩との分別を行うことを特徴とするタンパク質結晶と塩との分別方法である。上記のタンパク質結晶の観測方法を用いて、光信号による情報を適宜抽出することにより、タンパク質結晶と塩とを識別することができるため、タンパク質結晶を非破壊で、明確に分別して、良質な単結晶を作製することができる。請求項7に記載の発明は、タンパク質と塩とを含有する被測定材料をゲル化してゲル液を作製するゲル液作製工程と、前記ゲル液から前記タンパク質を結晶化させるタンパク質結晶化工程と、前記タンパク質結晶化工程後の前記ゲル液を、超広帯域光源から発する光を用いてOCT計測するOCT計測工程と、前記OCT計測における光信号による情報を抽出することにより、前記タンパク質結晶と前記塩とを分別する分別工程とを備えていることを特徴とするタンパク質結晶と塩との分別方法である。前記したように、超広帯域光源を用いることにより、タンパク質結晶を高精度に観測することが可能となる。また、ゲルを用いた結晶化法により、散乱光信号を増強して、タンパク質結晶をより容易に観測することが可能となる。一方、ゲルを用いた結晶化法においては、タンパク質と共に塩を用いてゲル液を作製するため、タンパク質結晶の成長と共に塩の結晶も生成される恐れがある。このため、ゲル液から成長した結晶が、タンパク質結晶か塩の結晶であるかを分別する必要がある。しかし、上記したように、超広帯域光源を用い、さらにゲルにより散乱光信号の増強がなされるため、OCT計測によりタンパク質結晶と塩とを容易に分別することができる。請求項8に記載の発明は、前記超広帯域光源が、超広帯域スーパーコンティニューム光源であることを特徴とする請求項7に記載のタンパク質結晶と塩との分別方法である。前記した通り、超広帯域SC光源を用いた場合、高感度で超高分解能な計測が可能となると共に、コヒーレンスを生かした位相差計測など高機能な計測が可能となるため、タンパク質結晶と塩とをより精度高く分別することができる。請求項9に記載の発明は、前記超広帯域スーパーコンティニューム光源から発する光の中心波長が、0.8μm帯であることを特徴とする請求項8に記載のタンパク質結晶と塩との分別方法である。前記した通り、中心波長が0.8μm帯の超広帯域SC光を用いることにより、深さ分解能2μm以下、感度110dB以上の超高分解能、高感度のOCT計測が可能となるため、タンパク質結晶と塩とをさらに精度高く分別することができる。上記したタンパク質結晶の観測は、以下に示す装置を用いて行うことが好ましい。即ち、本発明に係るタンパク質結晶の観測方法に用いられるOCT計測装置は、超広帯域光源と、前記超広帯域光源から発した光を、信号光と参照光とに分岐する光分岐手段と、前記光分岐手段により分岐された信号光を、前記タンパク質結晶に照射する信号光照射手段と、前記光分岐手段により分岐された参照光の光路長を調節する光路長調節手段と、前記光路長調節手段により光路長が変更された参照光と、前記信号光照射手段により照射され、前記タンパク質結晶により反射された散乱光との干渉信号に基づいて、前記タンパク質結晶の内部の断層情報を計測する計測手段とを備えていることが好ましい。上記は、本発明に係るタンパク質結晶の観測方法に用いられる好ましいOCT計測装置を具体的に規定するものであり、以下、図2に基づいて説明する。図2は、OCT計測装置の主要部を模式的に示したものであり、OCT計測における測定原理を説明する図である。図2において、10aは光源、34aは参照光用鏡、35aは光分岐器ビームスプリッタ、40aは光検知器、50aは試料である。なお、参照光用鏡34aは、上下方向に移動して移動量Δm、参照光の光路長を変更できるようになっている。図2に示すように、光源10aより発せられた光は、光分岐器35aにより、試料50aに向かう信号光と参照光用鏡34aに向かう参照光とに分割される。試料50aに向かった信号光は試料50aに入射された後、反射されて散乱光を発生する。一方、参照光用鏡34aに向かった参照光は参照光用鏡34aにより反射される。このとき、試料50a内の測定深さに応じて、参照光用鏡34aを移動させ、参照光の光路長を調節する。その後、発生した散乱光と、光路長が調節された参照光とは、合波手段により、空間的に重ね合わされて、干渉を引き起こす。この干渉光が光検出器40aにより検出され、測定される。この結果、タンパク質結晶の内部の断層に応じた情報を計測することができる。なお、上記光検出器40による分解能ΔZは、以下の式で表される。但し、λはガウス型のスペクトルの中心波長、Δλはこのときのスペクトル幅である。上記の式より、Δλが大きい帯域が広いほどΔZが小さくなり、高分解能となることが分かる。このため、本発明に係るタンパク質結晶の観測方法においては、光源の一例としてとして、図3に示すようなスペクトルを有する超広帯域SC光源を用いている。図3において、上図はこの超広帯域SC光を線形表示したものであり、下図は対数表示したものである。なお、両図において横軸は波長nmであり、縦軸は強度a.u.およびdBである。図3に示すように、この超広帯域SC光は、20dB程度の強度を示す波長1300~2000nmの広い帯域バンド幅においてΔλ=580nm、強度としては2dBという平坦性を示している。このため、低雑音、高コヒーレンス、高強度の測定が可能となり、大きさ数10μmのタンパク質結晶であっても、超高分解能OCT計測を行うことができ、非破壊で、リアルタイムに3次元観測することができる。そして、上記OCT計測装置においては、前記超広帯域光源が、超広帯域スーパーコンティニューム光源であることが好ましい。前記したように、超広帯域光源を用いることにより、高分解能なイメージを得ることができ、その超広帯域光源の内でも、低雑音、高コヒーレンスで、かつガウス型などの単峰で滑らかなスペクトル形状を有する高精度な超広帯域SC光源を用いた場合、高感度で超高分解能な計測が可能となると共に、直線偏光を活用した偏光依存性の計測や、非常に広く帯域を広げたときの分光計測、コヒーレンスを生かした位相差計測など高機能な計測が可能となるため、結晶の観測のみならず、その周囲環境の組成や物性などの情報も観測することができる。また、本発明に係るタンパク質結晶の観測方法に用いられるタンパク質結晶の観測装置としては、上記のOCT計測装置を備えていることが好ましい。超高分解能、高感度のOCT計測装置を備えているため、大きさ数10μmのタンパク質結晶であっても、超高分解能、高感度のOCT計測を行うことができ、非破壊で、リアルタイムに3次元観測することができる。この結果、結晶の成長をより高精度に制御して、より良質な単結晶を作製することができ、X線結晶解析を用いたタンパク質の立体構造の迅速かつ精度高い解析に大きく寄与することができる。このように、超高分解能、高感度のOCT計測装置を用いることにより、超高分解能、高感度のOCT計測を行うことができるため、タンパク質結晶の成長を、非破壊で、リアルタイムに3次元観測することができる。そして、観測された情報に基づき、結晶の成長過程を高精度に制御することができるため、良質な単結晶を作製することができる。また、このようなタンパク質結晶の観測装置を用いることにより、前記したように、高感度で超高分解能な計測が可能となると共に、直線偏光を活用した偏光依存性の計測や、非常に広く帯域を広げたときの分光計測、コヒーレンスを生かした位相差計測など高機能な計測が可能となるため、結晶の周囲環境の組成や物性などの情報も観測することができ、結晶化能の評価系を確立することができる。そして、光信号による情報を適宜抽出することにより、タンパク質結晶と塩を識別することができるため、タンパク質結晶を非破壊で、明確に分別して、良質な単結晶を作製することができる。本発明によれば、タンパク質結晶の成長過程を、非破壊でリアルタイムに3次元観測して、結晶の成長を高精度に制御することができ、良質な単結晶の作製が可能となる。以下、本発明を実施の形態に基づいて説明する。なお、本発明は、以下の実施の形態に限定されるものではない。本発明と同一および均等の範囲内において、以下の実施の形態に対して種々の変更を加えることが可能である。[1]OCT装置最初に、OCT装置について説明する。なお、以下では、平均波長1.5μmの超広帯域SC光生成部が設けられたOCT装置と、平均波長0.8μmの超広帯域SC光生成部が設けられたOCT装置とを例に挙げて説明する。1.平均波長1.5μmの超広帯域SC光生成部が設けられたOCT装置図1は、本発明の実施の形態において用いられるOCT装置の一例である平均波長1.5μmの超広帯域SC光生成部が設けられたOCT装置の要部の構成を示す図である。このOCT装置は、太い実線で示される超広帯域SC光生成部と細い実線で示される観測部に大別される。1超広帯域SC光生成部イ構成図1において、10は半導体レーザであり、11は偏光ビームカプラPBCであり、12は波長分割多重カプラWDMである。13は高濃度エルビウム添加ファイバHC-EDF100cmであり、14は外部モニタとの接続部Monitoroutである。15は単一モードファイバSMF28であり、16は正常分散型非線形ファイバNDHNFである。20はレンズ系であり、λ/2は半波長板を、λ/4は1/4波長板を示し、PBSは偏光ビームスプリッタを示す。また、FRはファラデー回転子を、BTは複屈折板を示す。ロ機能半導体レーザ10は、波長976nmのレーザ光を生成する超短パルスレーザであり、図1においては、高出力化の観点より2台配置されている。また、波長976nmの光を採用しているのは、エルビウム添加ファイバの励起に適しているためである。2つの半導体レーザ10により生成された各レーザ光は、PBC11により偏光される。偏光された2つのレーザ光は、WDM12にて合波される。合波されたレーザ光は、高濃度エルビウム添加ファイバ13により、強度が増加されてレンズ系20に送られる。レンズ系20を経由し、単一モードファイバ15に至ったレーザ光は、その後、高濃度エルビウム添加ファイバ16により、図4に示すガウス型のスペクトル平均波長1.5μmを有する超広帯域SC光が生成される。2観測部イ構成図1において、30はサーキュレータCirculator、31は照準光照射器Aimingbeamである。32はスキャンニング照射受光手段としてのOCTプローブOCTprobe、34は光路長調整手段としての高速度走査部Highspeedscanningdelaylineであり、33aおよび33bはそれぞれの偏光調整器Polarizationcontrollerである。35は光分岐器兼合波器、36は光分岐器である。40は光検知器Detectorであり、41はその電子機器部Detectionelectronicであり、コンピュータ42に接続されている。そして、50は観測される試料Sampleである。ロ機能上記において生成された超広帯域SC光は、サーキュレータ30を経由して、光分岐器兼合波器35に送られ、50/50、即ち、信号光と参照光とに均等に分岐される。信号光は、偏光調整器33aを経由して、OCTプローブ32に送られ、参照光は、偏光調整器33bを経由して、高速度走査部34に送られる。OCTプローブ32に送られた信号光は、試料50に照射される。この信号光の照射により、試料50から散乱光が発生する。なお、照射に際しては、図示してある2個のレンズの間隔を調節して、試料50中での焦点位置を変更することが出来る。一方、高速度走査部34に送られた参照光は、光路長を変化させて反射される。散乱光は、OCTプローブ32で受光され、偏光調整器33aを経由して光分岐器兼合波器35に送られる。一方、光路長が調整された参照光は偏光調整器33bを経由して光分岐器兼合波器35に送られる。散乱光と参照光とは、光分岐器兼合波器35において合波され、干渉光を生成する。生成された干渉光は、照準光照射器31からの光と、10:90の比率で合波されて、光検知器40へと送られる。干渉光を検知した光検知器40は、それに対応した干渉信号を出力する。干渉信号は、電子機器部41を経由してコンピュータ42に送られた後、処理されて試料50の位置情報を出力する。2.平均波長0.8μmの超広帯域SC光生成部が設けられたOCT装置図5は、本発明の実施の形態において用いられるOCT装置の別の一例である平均波長0.8μmの超広帯域SC光生成部が設けられたOCT装置の超広帯域SC光生成部を示す図である。そして、図6は、このOCT装置を示す図である。図5において、71は超広帯域SC光生成部であり、72はTi:サファイアレーザであり、73は偏光器であり、74は偏波保持ファイバPMFであり、75は単一モードファイバSMFである。超広帯域SC光生成部71では図7に示した平均波長0.8μmの超広帯域SC光が生成される。高強度の超短パルスレーザーTi:サファイアレーザ72と正常分散の特性を示す偏波保持ファイバPMF74を用いることにより、雑音が非常に大きな一般的なSC光と異なり、高強度低雑音ガウス型で広帯域な高精度SC光が超広帯域SC光生成部71で生成される。なお、図5において、PMF74の出力に偏光子を用いた場合、直線偏光な、より高精度のSC光とすることができるため、メインの偏光成分に直交する他の小さな成分によるゴースト余分な干渉信号が発生する偏光度が悪い場合と異なり、より高精度な検出が可能となる。図6において、81はOCT装置であり、82は図5で示した超広帯域SC光生成部であり、83はバランス検出器Balanceddetectorであり、84はコンピュータPCであり、85は照準光照射器であり、86、87は光路長調整用のPCであり、88はガルバノミラーXYGalvoであり、89はファイバカプラである。ファイバカプラ89としては波長帯域の広い1:1のファイバカプラを用い、測定系の波長分散を補償すると共に、焦点距離が短く色分散を補正したレンズを用いる。図6に示したOCT装置の光源として、図7のスペクトルを有する超広帯域SC光を用いることにより、例えば図8に示した干渉波形が得られる。即ち、サイドの成分がない綺麗な干渉波形が得られ、空気中で2.9μm、サンプル中で2.1μmの超高分解能計測が可能となる。なお、図6に示したOCT装置を用いた測定においては、赤色の参照ビームをSC光に重ねてサンプルにレーザを照射し、CCDカメラによりレーザの照射位置を観察しつつ、3D計測でタンパク質結晶の構造や配置を観測する。このとき、サンプルを載せた台を自動制御で動かすことにより、同じプレート上の異なるサンプルを観測することもできる。[2]タンパク質結晶次に、試料であるタンパク質結晶について説明する。本実施の形態においては、ゲル中で結晶成長させたタンパク質結晶が好ましく用いられる。具体的には、寒天のようなゲル中にタンパク質を染込ませたり、ゲルとタンパク質とを混合して静置しておくことにより、結晶成長させることが好ましい。ゲル中で結晶成長させることにより、300nm程度の大きさのゲルの網目の中に、3~5nmの大きさのタンパク質の結晶が多数存在するため、強い散乱を得ることができ、透明で見えにくい結晶の可視化が可能となる。以下に、実施例を挙げ、本発明をより具体的に説明する。なお、以下の実施例においては、前記した平均波長0.8μmの超広帯域SC光生成部が設けられたOCT装置を使用した。実施例1本実施例においては、ゲル中で結晶成長させたタンパク質結晶を、光学顕微鏡および超広帯域SC光を光源とするOCT装置を用いて観測し、両者の観測結果を比較した。1.結晶化条件1タンパク質溶液の調製60mgの卵白リゾチームを、1.0mlの0.1M酢酸ナトリウムに溶解させ、60mg/mlのタンパク質溶液を調製した。2リザーバー溶液の調製0.1M濃度の酢酸ナトリウム溶液溶媒:超純水を調製しpH:4.5、さらに、5.12M濃度の塩化ナトリウムを溶かし込み、リザーバー溶液を調製した。3寒天液ゲルの調製3mgの寒天と50mlの超純水を用いて寒天液を調製し、その後、寒天液400μlに超純水100μlを加え、ゲル液とした。4クエン酸ナトリウム溶液の調製0.6M濃度のクエン酸ナトリウム溶液溶媒:超純水を調製した。5塩化カルシウム溶液の調製132mgの塩化カルシウム二水和物を1mlの超純水に溶解して、1.5M濃度の塩化カルシウム溶液を調製した。6タンパク質結晶の作製1μlのタンパク質溶液、1μlのリザーバー溶液、1μlのクエン酸ナトリウム溶液、1μlの塩化カルシウム溶液、2μlのゲル液を混和し、以下に記載する最終濃度の結晶作製溶液とした。タンパク質:10mg/ml塩化ナトリウム:0.85M酢酸ナトリウム:0.066M、pH4.5クエン酸ナトリウム:0.1M塩化カルシウム:0.25Mアガロースゲル:1.6その後、20°Cで静置し、バッチ法にてタンパク質結晶を形成させた。2.結晶化の観測72時間経過後、以下に示す観測条件の下、光学顕微鏡およびOCT装置を用いて、結晶の成長状況を観測した。1観測条件イ.顕微鏡観測光学顕微鏡:NikonSMZ1000光源:白色光ロ.OCT観測光源:810nm中心SC光、帯域幅134nm測定感度:100dB光強度:SC出力350mW、干渉計入力30mW分解能:空気中2.9μm、サンプル中2.0μm観測領域:横2mm×縦2mm×高さ1mm3次元ピクセル数:横250×縦250×高さ10003次元2観測結果観測結果を図9に示す。図9において、aは顕微鏡画像であり、bはOCTイメージである。沈殿中にタンパク質結晶が存在する○印で示した箇所が、図9aに示すように、顕微鏡画像では結晶の存在の確認が困難である。これに対して、OCTイメージでは、図9bに示すように、リゾチームの結晶を明確に確認することができる。。5塩化カルシウム溶液の調製22mgの塩化カルシウム二水和物を1mlの超純水に溶解して、0.15M濃度の塩化カルシウム溶液を調製した。6タンパク質結晶の作製1μlのタンパク質溶液、1μlのリザーバー溶液、1μlのリン酸カリウム溶液、1μlの塩化カルシウム溶液、2μlのゲル溶液を混和し、以下に記載する最終濃度の結晶作製溶液とした。タンパク質:12mg/ml塩化ナトリウム:0.85M酢酸ナトリウム:0.066M、pH4.5リン酸カリウム:0.1M、pH7.5塩化カルシウム:0.05Mアガロースゲル:2その後、20°Cで静置し、バッチ法にてタンパク質結晶を形成させた。2.結晶化の観測1観測条件72時間経過後、実施例1と同じ観測条件で顕微鏡観測およびOCT観測を行った。なお、OCT観測の観測領域断面は横2mm×高さ0.5mm、ピクセル数は横250×高さ500で行った。2観測結果光学顕微鏡の観測結果を図10に示し、OCT観測の結果を図11に示す。図10、11において、左側にある低分子塩の結晶はリン酸カルシウムを示し、右側にあるタンパク質結晶はリゾチームの結晶を示している。図10に示すように、顕微鏡画像ではいずれも透明な結晶であり、両者を分別することは困難である。これに対して、OCTイメージでは、図11に示すように、形状や信号強度に明らかに差異があり、両者を分別することができる。実施例3本実施例は、タンパク質として卵白リゾチームの結晶をゲル中で成長させるにあたって、ゲル濃度を変えて結晶成長を行ったときの様子を観測したものである。1.結晶化条件1タンパク質溶液の調製150mgの卵白リゾチームを、1.0mlの0.1M酢酸ナトリウムに溶解させ、150mg/mlのタンパク質溶液を調製した。2リザーバー溶液の調製0.1M濃度の酢酸ナトリウム溶液溶媒:超純水を調製しpH:4.5、さらに、1.53M濃度の塩化ナトリウムを溶かし込み、リザーバー溶液を調製した。3寒天液ゲルの調製3mgの寒天と50mlの超純水を用いて寒天液を調製し、その後、寒天液450μlに超純水50μlを加え、ゲル液とした。4タンパク質結晶の作製2μlのゲル液、2μlのタンパク質溶液と2μlのリザーバー溶液を混和し、最終濃度50mg/mlタンパク質、0.51M塩化ナトリウム、1.8アガロースゲルの結晶作製溶液とし、20°Cで静置し、バッチ法にてタンパク質結晶を形成させた。2.結晶化の観測72時間経過後、OCT観測を行った。1観測条件光源:中心波長810nmの超広帯域SC光源、帯域幅134nm測定強度:100db光強度:SC出力350mW、干渉計入力:30mW上記の観測条件の下、CCDカメラを用いて、結晶と照射光との位置をモニタしながら、ゲル中における結晶の成長状況を観測した。2観測結果観測結果OCTイメージを、図12および図13に示す。図12、13において、横軸は横方向の位置を示し、縦軸は縦方向の位置を示している。なお、図12におけるa、bおよび図13におけるa~dは、1.8アガロースゲル中で育成したリゾチームの結晶を示しており、それぞれは、同一サンプルの異なる測定点での測定結果である。なお、これらの2次元のイメージを組み合わせることにより、3次元イメージを作成することが可能となる。図12、13より、OCT計測を用いることにより、タンパク質の結晶を、ゲルや空気と鮮明に分別できることが分かる。実施例4本実施例は、タンパク質としてリゾチームの結晶をゲル中で成長させるにあたって、ゲル材料を変えて結晶成長を行ったときの様子を観測したものである。1.結晶化条件タンパク質溶液:リゾチームLysozyme50mg/mlリザーバー溶液:0.1M酢酸ナトリウムSodiumacetatepH:4.50.51M塩化ナトリウムSodiumchrolideゲル液:AgaroseIX-ASIGMA社製3gを50mlの超純水で調製し、6ゲル液とした。この液を一度ゲル化させた後、再び融解し、超純水で6倍および3倍に希釈し、1ゲル液および2ゲル液とした。得られたゲルの2μlを、結晶化用プレートのドロップ部分に添加し、固化した後、上記タンパク質溶液2μlとリザーバー溶液2μlとの混合溶液を、固化したゲルの上に積層した。次に、リザーバー部分に、リザーバー溶液100μlを加え、20°Cにて静置し、シッティングドロップ蒸気拡散法にてタンパク質結晶を形成させた。2.結晶化の観測120時間経過後、各混合液を用いて、OCT観測を行った。1観測条件実施例3と同じ観測条件で行った。2観測結果観測結果OCTイメージを、図14に示す。なお、図14において、A1、C1、E1はプレートのドロップ番号を表し、1、2、6は最終ゲル濃度を表している。図14に示すように、溶液中にタンパク質結晶が存在する場合、OCTイメージにおいて位相差の発生を確認することができ、タンパク質結晶の存在を確認することができる。そして、この位相差は、結晶の形に散乱が生じることにより見えるものであるため、タンパク質結晶が扁平な形状であることが分かる。また、ゲル中にタンパク質結晶が存在する場合や、ゲル上にタンパク質結晶が存在する場合、OCTイメージにおいて偏光の変化を確認することができ、タンパク質結晶の存在を確認することができる。以上より、ゲル材料を選択することによって、溶液中、ゲル上、ゲル中の何れに形成された結晶であっても、その成長を観測することができ、結晶周囲の状況も確認できることが検証された。そして、本実施例においては、ゲル液が濁っているにも拘わらず、上記の観測を行えることが確認できた。実施例5本実施例は、タンパク質としてSynechococcus由来phosphoribulokinasePRKの結晶をゲル中で成長させるにあたって、ゲル材料を変えて結晶成長を行ったときの様子を観測したものである。1.結晶化条件タンパク質溶液:PRK20mg/mlリザーバー溶液:0.1MMES-KOHpH6.510w/vIsopropanol0.2M酢酸カリウムPotassiumacetateゲル液:AgaroseSeaKemLonza社製3gを50mlの超純水で調製し、6ゲル液とした。この液を一度ゲル化させた後、再び融解し、超純水で6倍、3倍および1.5倍に希釈し、1ゲル液、2ゲル液、および4ゲル液とした。上記したゲル液を用いたこと以外は、実施例4と同じ方法によりタンパク質結晶を形成させた。2.結晶化の観測120時間経過後、各混合液を用いて、OCT観測を行った。1観測条件実施例3と同じ観測条件で行った。2観測結果観測結果OCTイメージを、図15に示す。なお、図15において、C1、E1、G1はプレートのドロップ番号を表し、1、2、4は最終ゲル濃度を表している。また、4μl2μl2μlは、混合溶液の量でタンパク質溶液2μlにリザーバー溶液2μlを加え総量4μlになっていることを示す。図15に示すように、本実施例においても、実施例4と同様に、溶液中、ゲル上、ゲル中の何れに形成された結晶であっても、その成長を観測することができる。そして、本実施例においても、ゲル液が濁っているにも拘わらず、上記の観測を行うことができた。また、図15中央図では、2つのタンパク質結晶の存在を確認することができるが、その散乱強度の違いにより、一方左側は結晶性が良く、他方右側は結晶性が悪いことが分かる。このように、本実施例によれば、散乱強度の違いにより、結晶性の良否を観測することができる。実施例6および比較例本実施例は、タンパク質としてPRKの結晶をゲル中で成長させるにあたって、実施例4、5とは異なるゲル材料を用いて結晶成長を行ったときの様子を観測したものである。また、本比較例は、光学顕微鏡により観測したものである。1.結晶化条件タンパク質溶液、およびリザーバー溶液は、実施例5と同じものを用いた。ゲル液としては、AgaroseSeaPlaquelonza社製3gを50mlの超純水で調製したものを用いた。上記タンパク質溶液2μlとリザーバー溶液2μlを混合し、得られた混合溶液を結晶化用プレートのドロップ部分に添加して結晶育成溶液とした。次に、リザーバー部分に、リザーバー溶液100μlを加え、20°Cにて静置し、シッティングドロップ蒸気拡散法にてタンパク質結晶を形成させた。2.結晶化の観測120時間経過後、OCT観測を行った。1観測条件実施例3と同じ観測条件で行った。また、比較例として、同じ試料につき、光学顕微鏡を用いて観測を行った。2観測結果観測結果OCTイメージを、図16に示す。なお、図16において、A1はプレートのドロップ番号を表し、0はゲル濃度を表している。図16に示すように、OCTによる観測では溶液中のタンパク質結晶が確認できることが分かる。一方、光学顕微鏡では、散乱光が弱いため、表面が観測されるだけであり、結晶の成長を確認することができなかった。以上説明したように、本発明によれば、タンパク質結晶を高分解能、非破壊でリアルタイムにその場観測することができる。また、高濁度の試料中のタンパク質結晶を観測することができる。そして、結晶の3次元構造、3次元分布、結晶とゲル相および液相の位置関係、塩とタンパク質結晶、不完全結晶アモルファスと完全結晶の分離、3次元配置の特定、沈殿、凝集などを観測することができ、結晶の内部に入り込んでいるゲルの分布をも観測することができる。