"大豆由来の不溶性窒素成分を含む糸状菌培養用培地。次のAまたはBの特徴を有する大豆由来の不溶性窒素成分を含む請求項1に記載の糸状菌培養用培地。A水分8以下、粗たん白質含量47以上、粗繊維7以下、粗灰分6.8以下、窒素分7.52以上、粒度0.106mm150メッシュパス90以上、抗原量100U/10mg以下B水分12以下、粗たん白質含量51.125以上無水物換算、粗繊維3~7、粗灰分6~7、窒素分8.18以上無水物換算、粒度0.355mm以上痕跡、0.25mm60メッシュパス90以上、0.15mm100メッシュパス50以上、ウレアーゼ活性度0.3以下糸状菌がAspergillus属、Humicola属またはTrichoderma属に属する菌である請求項1または2に記載の糸状菌培養用培地。糸状菌がHumicolainsolensである請求項1~3のいずれかに記載の糸状菌培養用培地。請求項1~4のいずれかに記載の糸状菌培養用培地によって、糸状菌を培養する方法。請求項1~4のいずれかに記載の糸状菌培養用培地によって、糸状菌を培養することにより、糸状菌に酵素を産生させる方法。酵素がセルラーゼ、ヘミセルラーゼ、プロテアーゼまたはリグニン分解酵素である請求項6に記載の方法。請求項1~4のいずれかに記載の糸状菌培養用培地によって、糸状菌を培養することにより、糸状菌に産生させる酵素を調節する方法。酵素がセルラーゼ、ヘミセルラーゼ、プロテアーゼまたはリグニン分解酵素である請求項8に記載の方法。請求項5に記載の方法によって培養された糸状菌を用い、バイオマスを分解する方法。バイオマスが草本系バイオマスである請求項10に記載の方法。草本系バイオマスがイナワラ、バガスまたはススキである請求項11に記載の方法。本発明は、イナワラ等の分解に有用なセルラーゼ、ヘミセルラーゼ等の酵素を効率的に産生できる糸状菌の培養条件の提供を課題とする。さらに、詳しくは、Humicola属の糸状菌がペレット化せず、結果として酵素を効率的に産生できる培養条件の提供を課題とする。本発明者らは上記課題を解決するために鋭意検討を行ったところ、窒素源として大豆由来の不溶性窒素成分を用いた糸状菌培養用培地を見出した。この糸状菌培養用培地で糸状菌を培養すると、イナワラ等の分解に有用なセルラーゼ、ヘミセルラーゼ等の酵素を効率的に糸状菌に産生させることが可能となる。さらに、Humicola属の糸状菌において、糸状菌がペレット化せず培養が行えることを見出し、本発明を完成するに至った。すなわち、本発明は、次の1~12で示される、糸状菌培養用培地、糸状菌を培養する方法等に関する。1大豆由来の不溶性窒素成分を含む糸状菌培養用培地。2次のAまたはBの特徴を有する大豆由来の不溶性窒素成分を含む上記1に記載の糸状菌培養用培地。A水分8以下、粗たん白質含量47以上、粗繊維7以下、粗灰分6.8以下、窒素分7.52以上、粒度0.106mm150メッシュパス90以上、抗原量100U/10mg以下B水分12以下、粗たん白質含量51.125以上無水物換算、粗繊維3~7、粗灰分6~7、窒素分8.18以上無水物換算、粒度0.355mm以上痕跡、0.25mm60メッシュパス90以上、0.15mm100メッシュパス50以上、ウレアーゼ活性度0.3以下3糸状菌がAspergillus属、Humicola属またはTrichoderma属に属する菌である上記1または2に記載の糸状菌培養用培地。4糸状菌がHumicolainsolensである上記1~3のいずれかに記載の糸状菌培養用培地。5上記1~4のいずれかに記載の糸状菌培養用培地によって、糸状菌を培養する方法。6上記1~4のいずれかに記載の糸状菌培養用培地によって、糸状菌を培養することにより、糸状菌に酵素を産生させる方法。7酵素がセルラーゼ、ヘミセルラーゼ、プロテアーゼまたはリグニン分解酵素である上記6に記載の方法。8上記1~4のいずれかに記載の糸状菌培養用培地によって、糸状菌を培養することにより、糸状菌に産生させる酵素を調節する方法。9酵素がセルラーゼ、ヘミセルラーゼ、プロテアーゼまたはリグニン分解酵素である上記8に記載の方法。10上記5に記載の方法によって培養された糸状菌を用い、バイオマスを分解する方法。11バイオマスが草本系バイオマスである上記10に記載の方法。12草本系バイオマスがイナワラ、バガスまたはススキである上記11に記載の方法。本発明によって提供される糸状菌培養用培地を用いることにより、セルラーゼ、ヘミセルラーゼ等の酵素を効率的に糸状菌に産生させることが可能となる。また、本発明によって培養した糸状菌を用いることにより、イナワラ等のバイオマスを原料として、エタノール等を製造することが可能となる。本発明の糸状菌培養用培地とは、Aspergillus属、Humicola属またはTrichoderma属等に属する糸状菌の培養に適する培地のことをいう。ここで糸状菌の培養に適するとは、糸状菌の増殖や、糸状菌に酵素を産生させるための培地として有効に利用できることを指す。本発明の糸状菌培養用培地は、大豆由来の不溶性窒素成分を含み、糸状菌の培養に適するものであれば、糸状菌の培養に有用な公知の他の成分等を含んでいてもよく、固体培地であっても液体培地であっても良い。特に液体培地においては、糸状菌がペレット化せず、分散した状態で培養できる培地であることが特に好ましい。このような糸状菌がペレット化せず、分散した状態で培養できる液体培地としては、窒素源として次のAのような特徴を有する不溶性窒素成分を含む本発明の糸状菌培養用培地等が挙げられる。A水分8以下、粗たん白質含量47以上、粗繊維7以下、粗灰分6.8以下、窒素分7.52以上、粒度0.106mm150メッシュパス90以上、抗原量100U/10mg以下である。また、上記Aのような特徴に加え、さらに、水溶性窒素指数NSIが概ね5以上、20未満、ウレアーゼ活性度0.02以下、トリプシンインヒビター活性1.5U/mg以下である、A’のような特徴を有する不溶性窒素成分を含むものであっても良い。このAまたはA’のような特徴を有する不溶性窒素成分として、例えば、市販のJ-オイルミルズソヤレックスSoyallex登録商標J-オイルミルズ製等が挙げられる。また、本発明の糸状菌培養用培地は、炭素源としてバイオマスをさらに含むこともできる。本発明の糸状菌培養用培地に含まれる大豆由来の不溶性窒素成分とは、大豆由来のタンパク質等窒素源になり得るものであって水に不溶なものを含むもののことをいい、糸状菌の増殖や、糸状菌に酵素を産生させるために有用な大豆由来の不溶性窒素成分であれば、従来知られているいずれのものも用いることができる。このような大豆由来の不溶性窒素成分として、例えば、上記AまたはA’のような特徴を有するものが挙げられる。このような特徴を有する大豆由来の不溶性窒素成分は、エクストルーダーで脱脂大豆を処理し、膨化、変性させた後、乾燥し、粉砕することで調製することができる。エクストルーダーによる脱脂大豆の処理は、上記AまたはA’のような特徴を有する大豆由来の不溶性窒素成分が得られる条件であれば、いずれの処理条件であっても良い。例えば、エクストルーダーKEI-87幸和工業株式会社製を用いる場合には、バレル温度160~190°C、圧力30~50kg/cm2、回転数280rpm、スクリュー配置に於いてニーディングディスクを6個含むスクリューを使用し、原料供給量530~600kg/時間、水供給量80~130リットル/時間、ダイ2.5mm×226穴の処理条件等が挙げられる。また、二軸型エクストルーダーKE145-25幸和工業株式会社製を用いる場合には、バレル温度180°C、圧力45kg/cm2、回転数280rpm、原料供給量77kg/hr、ダイ2mm×10穴の処理条件やバレル温度140°C、圧力54kg/cm2、回転数280rpm、原料供給量77kg/hr、ダイ2mm×10穴の処理条件等が挙げられるまた、大豆由来の不溶性窒素成分として、次のBのような特徴を有するものも用いることができる。B水分12以下、粗たん白質含量51.125以上無水物換算、粗繊維3~7、粗灰分6~7、窒素分8.18以上無水物換算、粒度0.355mm以上痕跡、0.25mm60メッシュパス90以上、0.15mm100メッシュパス50以上、ウレアーゼ活性度0.3以下である。また、上記Bのような特徴に加え、さらに、抗原量5000~2万U/10mgであり、水溶性窒素指数NSIが概ね15以上35未満である、B’のような特徴を有する不溶性窒素成分を含むものであっても良い。このBまたはB’のような特徴を有する不溶性窒素成分として、例えば、市販のソイプロJ-オイルミルズ製登録商標等が挙げられる。このような特徴を有する大豆由来の不溶性窒素成分は、脱脂大豆を乾燥し、粉砕することで調製することができる。このBまたはB’のような特徴を有する大豆由来の不溶性窒素成分を用いた糸状菌培養用培地では、上記AまたはA’のような特徴を有する大豆由来の不溶性窒素成分を用いた糸状菌培養用培地と比べてやや糸状菌がペレット化しやすく、必ずしも糸状菌が完全に分散した状態で培養することはできないが、糸状菌に酵素を産生させる場合等において有用である。本発明の培地を用いて培養する糸状菌としては、従来知られているいずれの糸状菌であっても良いが、例えば、Aspergillus属、Humicola属またはTrichoderma属等に属する糸状菌や難培養性の糸状菌等が挙げられる。このような糸状菌として、Humicolainsolens等が挙げられる。本発明の糸状菌を培養する方法とは、本発明の大豆由来の不溶性窒素成分を含む糸状菌培養用培地を用いて、糸状菌を増殖させ、また、糸状菌に酵素を産生させる培養方法のことをいう。本発明の糸状菌を培養する方法では、本発明の糸状菌培養用培地を培地として用いれば、従来、糸状菌の培養方法として知られているいずれの方法を用いても良い。例えば、液体培地を用いて糸状菌を培養する場合には、PW-1サクラ精機製等の市販のジャーファメンターを用いて培養してもよく、MIR-220RSANYO製等の市販の震盪培養機を用いて震盪培養してもよい。震盪培養することにより、糸状菌の増殖や、糸状菌による酵素の産生を効率的に行うことができるため好ましい。また、本発明の糸状菌を培養する方法において、糸状菌の生育を促し、生育ステージを均一にするために、糸状菌の胞子を本発明の糸状菌培養用培地に植菌して培養を行うことが好ましい。本発明の糸状菌に酵素を産生させる方法とは、本発明の糸状菌を培養する方法において、さらに、糸状菌による酵素の産生を促進できる培養方法のことをいう。本発明の糸状菌に酵素を産生させる方法では、本発明の糸状菌培養用培地を培地として用いれば、糸状菌に酵素を産生させるために有効な方法として知られているいずれの方法を用いても良い。例えば、前培養によって糸状菌を増殖させた後、増殖した糸状菌を効率的に酵素が産生できる培地に植菌して本培養を行うこと等が挙げられる。ここで、前培養では、糸状菌が効率的に増殖できる糸状菌培養用培地を用いることが好ましく、このような糸状菌培養用培地として、糸状菌がペレット化せず、分散して培養できる、上記AまたはA’のような特徴を有する大豆由来の不溶性窒素成分を含む糸状菌培養用培地を用いることが好ましい。また、やや糸状菌がペレット化しやすく、必ずしも糸状菌が完全に分散した状態で培養を行うことはできないが、上記BまたはB’のような特徴を有する大豆由来の不溶性窒素成分を含む糸状菌培養用培地を用いることもできる。本培養では、糸状菌が効率的に酵素を産生できる糸状菌培養用培地を用いることが好ましい。このような糸状菌培養用培地として、上記AあるいはA’またはBあるいはB’のような特徴を有する大豆由来の不溶性窒素成分を含む糸状菌培養用培地を用いることができる。特に上記AまたはA’のような特徴を有する大豆由来の不溶性窒素成分を含む糸状菌培養用培地を用いて糸状菌がペレット化せず、分散した状態で前培養を行い、糸状菌を効率よく増殖させた後、上記BまたはB’のような特徴を有する大豆由来の不溶性窒素成分を含む糸状菌培養用培地でこの糸状菌を本培養することにより、糸状菌に特に効率的に酵素を産生させることができる。本発明の糸状菌に酵素を産生させる方法により、糸状菌によって産生される酵素としては、キシラナーゼ活性、βキシロシダーゼ活性等を有するヘミセルラーゼ、セロビオハイドラーゼ活性、エンドグルカナーゼ活性、β-グルコシダーゼ活性等を有するセルラーゼ等の糖化酵素やプロテアーゼやリグニン分解酵素等が挙げられる。本発明の実施例においては、本発明の糸状菌培養用培地を用いて糸状菌を培養することにより、カバ由来キシラン分解活性主にキシラナーゼ活性およびパラ-ニトロフェニル-β-D-キシロピラノシド分解活性主にβ-キシロシダーゼ活性を測定することにより、これらの酵素活性を有するヘミセルラーゼが産生され、パラ-ニトロフェニル-β-D-ラクトシド分解活性主にセロビオハイドラーゼ活性、エンドグルカナーゼ活性およびパラ-ニトロフェニル-β-D-グルコピラノシド分解活性主にβ-グルコシダーゼ活性を測定することにより、セロビオハイドラーゼ活性、エンドグルカナーゼ活性、β-グルコシダーゼ活性等を有するセルラーゼが産生されていることを確認している。本発明の糸状菌に産生させる酵素を調節する方法とは、本発明の糸状菌を培養する方法において、糸状菌の培養に用いる糸状菌培養用培地を選択することによって、糸状菌に産生させる酵素の種類や組み合わせ、量等を調節することをいう。この糸状菌培養用培地は、その培地に含まれる成分によって選択することができ、特に、大豆由来の不溶性窒素成分によって選択することが好ましい。例えば、糸状菌培養用培地として、上記AまたはA’のような特徴を有する大豆由来の不溶性窒素成分を含む糸状菌培養用培地を選択し、Humicolainsolens等の糸状菌を培養する場合には、パラ-ニトロフェニル-β-D-キシロピラノシド分解活性主にβ-キシロシダーゼ活性pNP-Xase等を有するヘミセルラーゼを産生させることができ、さらにパラ-ニトロフェニル-β-D-ラクトシド分解活性主にセロビオハイドラーゼ活性、エンドグルカナーゼ活性pNP-Lase等を有するセルラーゼを多く産生させることができる。また、糸状菌培養用培地として、上記BまたはB’のような特徴を有する大豆由来の不溶性窒素成分を含む糸状菌培養用培地を選択し、Humicolainsolens等の糸状菌を培養する場合には、パラ-ニトロフェニル-β-D-ラクトシド分解活性主にセロビオハイドラーゼ活性、エンドグルカナーゼ活性pNP-Lase等を有するセルラーゼを産生させることができ、さらにパラ-ニトロフェニル-β-D-キシロピラノシド分解活性主にβ-キシロシダーゼ活性pNP-Xase等を有するヘミセルラーゼを多く産生させることができる。本発明のバイオマスを分解する方法とは、上記のような糸状菌に産生させたセルラーゼ、ヘミセルラーゼ、プロテアーゼやリグニン分解酵素等によって、バイオマスを糖化し、分解することをいう。ここで、分解対象となるバイオマスとしては、バガス、ススキまたはイナワラ等の草本系バイオマスや、木質系バイオマス等が挙げられる。これらを炭素源として本発明の糸状菌培養用培地に加えることにより、糸状菌を培養しながら、これらのバイオマスを分解することができる。以下、実施例によって本発明を詳細に説明するが、本発明はそれに限定されるものではない。糸状菌培養用培地糸状菌培養用培地として、グルコース5w/vと大豆由来の不溶性窒素成分を0.3w/v含む培地を調製した。この大豆由来の不溶性窒素成分は、以下のように調製したものをそれぞれ用いた。不溶性窒素成分1J-オイルミルズソヤレックスSoyallex登録商標脱脂大豆水溶性窒素指数15~35程度J-オイルミルズ製を、エクストルーダーKEI-87幸和工業株式会社製にて、バレル温度190°C、圧力54~69kg/cm2、回転数280rpm、スクリュー配置に於いてニーディングディスクを6個含むスクリューを使用し、原料供給量770kg/時間、水供給量123リットル/時間、ダイ2.5mm×226穴の条件下で処理し、大気中に押し出して膨化、変性させた。この処理物を3~5mm程度に切断し、80°Cの温風で充分に乾燥し、これを粉砕機ACM-100ホソカワミクロン製にて粉砕したものを、J-オイルミルズソヤレックスSoyallex登録商標として調製した。このように調製された不溶性窒素成分は、水分8以下、粗たん白質含量47以上、粗繊維7以下、粗灰分6.8以下、窒素分7.52以上、粒度0.106mm150メッシュパス90以上、抗原量100U/10mg以下であるという特徴Aを有する。2ソイプロ登録商標脱脂大豆水溶性窒素指数15~35程度J-オイルミルズ製を、粉砕機ACM-100ホソカワミクロン製でソイプロ登録商標として調製した。このように調製された不溶性窒素成分は、水分12以下、粗たん白質含量51.125以上無水物換算、粗繊維3~7、粗灰分6~7、窒素分8.18以上無水物換算、粒度0.355mm以上痕跡、0.25mm60メッシュパス90以上、0.15mm100メッシュパス50以上、ウレアーゼ活性度0.3以下であるという特徴Bを有する。糸状菌培養用培地の調製方法蒸留水100mlを500ml三角フラスコに入れ、グルコース5w/v、不溶性窒素成分0.3w/vを添加しよく溶かした。その後、オートクレーブES-315:TOMY製で121°C、20分高温高圧滅菌を行い、糸状菌培養用培地とした。糸状菌の培養実施例1で調製した糸状菌培養用培地を用い、糸状菌の培養を行った。比較として、基本培地を用いた培養も行った。1.糸状菌HumicolainsolensATCC26908株ATCCAmericanTypeCultureCollectionの菌株保存機関より住商ファーマインターナショナル社を通じて入手したを用いた。2.前培養用培地1糸状菌培養用培地実施例1で調製した糸状菌培養用培地を用いた。2基本培地グルコース5w/v、Yeastextract2w/v、Polypepton0.1w/v、硫酸マグネシウム0.03w/v、塩化カルシウム0.03w/vを含む培地を基本培地として調製した。即ち、蒸留水50mlを500ml三角フラスコに入れ、グルコース関東化学製5w/v、YeastextractBD製2w/v、Polypepton日本製薬製0.1w/v、を添加しよく溶かした。その後、オートクレーブES-315:TOMY製で121°C、20分高温高圧滅菌を行った1。次に10w/v硫酸マグネシウム水溶液和光純薬製、10w/v塩化カルシウム水溶液和光純薬製を調製し、オートクレーブES-315:TOMY製で上記と同様に滅菌した後、0.03w/vになるように上記1に無菌的に添加し、基本培地とした。3比較用培地グルコース5w/v、比較用窒素成分0.3w/v、硫酸マグネシウム0.03w/v、塩化カルシウム0.03w/vを含む培地を比較用培地として調製した。比較用窒素成分は、Polypepton-Y日本製薬製、PhytonePeptonBBL製、ゼラチンペプトンnacalaitesque製、乾燥おからさとの雪食品製、小麦ふすまナチュラルキッチン製、米ぬかノイマン製、魚粉益川商店製、菜種ミールJ-オイルミルズ製、コーングルテンミールJ-オイルミルズ製、脱脂大豆J-オイルミルズ製またはペプトン極東製薬工業製をそれぞれ用い、上記2の基本培地と同様に比較用培地を調製した。3.本培養用培地炭素源としてコシヒカリのイナワラを一週間程度天日干しして乾燥し実験用カッティングミルP-15FRITSCH製にて粉砕した後、80メッシュで篩別したものを5w/v含み、窒素源としてJ-オイルミルズソヤレックスSoyallex登録商標として調製した不溶性窒素成分を0.3w/v含むものをpH6.0としたものを本培養用の糸状菌培養用培地として調製した。即ち、蒸留水100mlを500ml三角フラスコに入れ、イナワラ5w/v、不溶性窒素成分0.3w/vを添加しよく溶かした。その後、オートクレーブES-315:TOMY製で121°C、20分高温高圧滅菌を行い、本培養用の糸状菌培養用培地とした。4.糸状菌培養1前培養上記の前培養用培地糸状菌培養用培地、基本培地または比較用培地をそれぞれ50mLいれた500mL三角フラスコに、糸状菌を1白金耳植菌し、200rpm、30°Cで3日間、震盪培養機MIR-220R:SANYO製を用いて震盪培養した。基本培地で前培養した場合、図1、A.に示したように、菌体は、1cmほどのぺレツトを形成したが、本願発明の糸状菌培養用培地で前培養した場合は、図1、B.に示したように、ペレットを形成せず、菌体が分散した状態で前培養できることが確認できた。比較用培地で前培養した場合は、図2に一例を示したが、いずれの比較用窒素成分を使用した場合も糸状菌がペレットを形成してしまい、十分に増殖が行えないことが確認された。2本培養上記糸状菌培養用培地で前培養した糸状菌を10w/vとなるように、上記の本培養用の糸状菌培養用培地1Lに加え、2LジャーファメンターPW-1:サクラ精機製を用いて、通気量はlvvm、回転数は溶存酸素量に合わせ200rpm~500rpmで制御し、10日間培養を行った。24時間おきに培養上清を10mLずつ採取し、採取したサンプルについてPHを6.0に調整し、次のような手法により、還元糖および遊離糖を測定することで、ヘミセルラーゼ等の酵素活性を調べた。還元糖の測定DNS表1の組成で混合した混合液のうち100μLに、DNS試薬300μLを加え、50°Cで60分間反応させた後、100°Cで5分間おくことにより反応を停止した。この反応溶液50μLを1000μLの滅菌水で希釈した後、吸光度500nmを測定した。DNS試薬の調製および還元糖の測定は、以下の文献を参考にして、次のように行った。文献:Useofdinitrosalicylicacidreagentfordeterminationofreducingsugar;G.L.Miller;Anal.Chem.,31,426-4281959使用薬品水酸化ナトリウム和光純薬工業製、3,5ジニトロサリチル酸DNS東京化成工業製、ロッシェル塩和光純薬工業製、結晶フェノール和光純薬工業製核酸抽出用、炭酸水素ナトリウム和光純薬工業製、ろ紙Whatman登録商標No,1、リン酸二水素ナトリウム和光純薬工業製、リン酸水素二ナトリウム和光純薬工業製、カルボキシメチルセルロースナトリウムCMCナカライテスク製XylanBirchwoodSIGMA製測定手法1DNS試薬溶液の調製4.5の水酸化ナトリウム水溶液60mLと1DNS水溶液176mLを混合し45gのロッシェル塩を加え完全に溶解させた。A液10水酸化ナトリウム水溶液4.4mLに結晶フェノール2gを加え完全に溶解させ、純水で20mLにフィルアップした。この溶液13.8mLに炭酸水素ナトリウムを1.38g完全に溶かした。B液B液にA液を全量加えよく攪拌させ、さらにロッシェル塩を飽和するまで溶かしこみ遮光して室温で2日以上安定させた。この操作でできた溶液をDNS試薬溶液とした。2還元糖の測定1Mリン酸二水素ナトリウム水溶液39mLと、1Mリン酸水素二ナトリウム水溶液61mLを混合し、pHを6に調整した物をリン酸バッファーとした。氷上にてリン酸バッファー25μL、純水975μL、1CMCまたは1XylanBirchwoodを125μL、培養上清125μLを入れ、激しく攪拌した。以下の操作は三連で行った。混合した溶液のうち100μLを予め反応の0時間として採取し、氷上に保管しておいた。残った溶液を150μLずつ採取した。50°Cの湯を入れたウォーターバスに浮かべ1時間反応させた。反応後は、直ちに氷上に移し5分間急冷した。溶液は次に氷上で100μLずつ分注し、0時間として保管しておいたサンプルとともに1で調製したDNS試薬を300μLずつ加え、よく攪拌した。その後5分間煮沸しその後直ちに冷水で5分間冷却した。最後にそこから50μL採取し、1000μLの純水で希釈した後、分光光度計BECKMANCOULTERDU730でOD500nmの波長の吸光度を測定した。遊離糖の測定pNP表2の組成で混合し、リン酸バッファーでpH6.0に調製したものを50°Cで10分間反応させた後、1M炭酸ナトリウムを100μL加えることで反応を停止した。この反応溶液の吸光度415nmを測定した。その結果、図3に示したように、培養日数が本培養開始から3日目以降では、カバ由来キシラン分解活性主にキシラナーゼ活性図3、XYLase、パラ-ニトロフェニル-β-D-キシロピラノシド分解活性主にβ-キシロシダーゼ活性図3、pNP-Xase、パラ-ニトロフェニル-β-D-ラクトシド分解活性主にセロビオハイドラーゼ活性、エンドグルカナーゼ活性図3、pNP-Laseが上昇することが確認された。一方、パラ-ニトロフェニル-β-D-グルコピラノシド分解活性主にβ-グルコシダーゼ活性図3、pNP-Gase、カルボキシメチルセルロース分解活性主にエンドグルカナーゼ活性図3、CMCaseは本培養の開始から7日目以降の後期になって始めて活性の上昇が確認され、カルボキシメチルセルロース分解活性に関しては、培養期間を通してほとんど活性がみられなかった。従って、この結果より、本発明の糸状菌培養用培地を用いて糸状菌を培養することにより、糸状菌にキシラナーゼ活性、βキシロシダーゼ活性等を有するヘミセルラーゼおよびセロビオハイドラーゼ活性、エンドグルカナーゼ活性、β-グルコシダーゼ活性等を有するセルラーゼ等を産生させることができることが確認できた。また、本培養の開始から培養日数が8日目の培地を顕微鏡で観察したところ、図4の写真左に示したように、HumicolainsolensATCC26908株がイナワラ粉末に対し菌糸を伸ばし分解しようとしていることが観察された。また、図4の写真右においてイナワラの細胞壁がわからないほど分解されていることも観察された。従って、これらより、HumicolainsolensATCC26908株によってイナワラ粉末を資化できることが確認された。さらに、同様に本発明の糸状菌培養用培地で前培養したHumicolainsolensATCC26908株を用いた本培養における培養上清と、基本培地で前培養したHumicolainsolensATCC26908株を用いた本培養における培養上清との活性を比較した。その結果、図5に示したように、CMCアーゼ活性CMCaseはほとんど差が見られなかった。キシラナーゼ活性XYLaseについては、基本培地で前培養したHumicolainsolensATCC26908株を用いた場合は、ほとんど活性が見られなかったが、糸状菌培養用培地で前培養した場合には、酵素活性が著しく高まり、基本培地で前培養した場合と比べて約1000倍の活性を示すことが確認された。この活性値は、キシラナーゼ分解酵素キシラナーゼ分解活性:400unit/mとして市販されているノボザイムH-TECUノボザイム製の活性の約10分の1程度であるが、さらなる上昇も可能であり、この点からも本発明の糸状菌培養用培地で前培養したHumicolainsolensATCC26908株を用いることにより、イナワラ等のバイオマスの分解が可能であることが十分に示唆された。従ってこの結果から、ペレットを形成せず、分散した状態で前培養を行い、十分に増殖した糸状菌を用いることが、バイオマスの分解において好ましいものと考えられた。糸状菌培養1前培養実施例1と同様に調製した前培養用の糸状菌培養用培地不溶性窒素成分:J-オイルミルズソヤレックスSoyallex登録商標50mlに、糸状菌の胞子を1白金耳植菌し、200rpm、30°Cで3日間、震盪培養機MIR-220R:SANYO製を用いて震盪培養した。2本培養実施例2と同様に調製した本培養用の糸状菌培養用培地不溶性窒素成分:J-オイルミルズソヤレックスSoyallex登録商標またはソイプロ登録商標いずれも5w/v100mlに、上記1の前培養で得られた糸状菌培養液をそれぞれ10w/vとなるように加え、200rpm、30°Cで10日間、震盪培養機MIR-220R:SANYO製を用いて震盪培養した。本培養終了後10日目の培養上清を採取し、採取したサンプルについて実施例2と同様の方法で遊離糖を測定することで、ヘミセルラーゼ等の酵素活性を調べた。その結果、図6に示したように、本培養においてソイプロ登録商標を窒素源とする糸状菌培養用培地を用いた場合図6、Bは、J-オイルミルズソヤレックスSoyallex登録商標を窒素源とする糸状菌培養用培地を用いた場合図6、Aよりもヘミセルラーゼ活性が上昇する事が確認された。したがって、この結果より、窒素源としてJ-オイルミルズソヤレックスSoyallex登録商標を含む培地で糸状菌を前培養した後、窒素源としてソイプロ登録商標を含む培地で本培養を行うことにより、糸状菌の酵素産生効率を高めることができた。また、J-オイルミルズソヤレックスSoyallex登録商標を窒素源とする糸状菌培養用培地で本培養を行なった場合は、パラ-ニトロフェニル-β-D-キシロピラノシド分解活性主にβ-キシロシダーゼ活性pNP-Xaseと比べて、さらにパラ-ニトロフェニル-β-D-ラクトシド分解活性主にセロビオハイドラーゼ活性、エンドグルカナーゼ活性pNP-Laseが高かった。一方で、ソイプロ登録商標を窒素源とする糸状菌培養用培地で本培養を行なった場合はパラ-ニトロフェニル-β-D-ラクトシド分解活性主にセロビオハイドラーゼ活性、エンドグルカナーゼ活性pNP-Laseと比べて、さらにパラ-ニトロフェニル-β-D-キシロピラノシド分解活性主にβ-キシロシダーゼ活性pNP-Xaseが高かったことから、糸状菌培養用培地に使用する窒素源の選択により、糸状菌に産生させる酵素の活性を調節できることが示唆された。従って、この結果より、糸状菌培養用培地に使用する窒素源等、糸状菌培養用培地やその成分を選択することにより、目的のバイオマスの種類に応じて、酵素活性の調節が可能となると考えられた。また、この結果から、本発明の糸状菌培養培地を用い、震盪培養機ではなく、さらに、通気性、撹拌性などが向上するジャーファメンターによってスケールアップ試験を行うことにより、更なる酵素産生の効率化が可能であると予測された。"