"ラブドウイルス科に属するウイルスのヌクレオタンパク質NP、ホスホタンパク質P、移行タンパク質P3またはP6タンパク質をコードする核酸配列の、ラブドウイルス科に属するウイルスに対する抵抗性を付与するための使用。前記NP、P、P3またはP6は、それぞれ配列番号1、3、5もしくは11に示すヌクレオチド配列、または該ヌクレオチド配列において1もしくは数個の置換、付加、挿入、および/もしくは欠失を有する改変配列を含むか、あるいはそれぞれ配列番号2、4、6もしくは12に示すアミノ酸配列、または該アミノ酸配列において1もしくは数個の置換、付加、挿入、および/もしくは欠失を有する改変配列を含むアミノ酸配列をコードする、請求項1に記載に記載の使用。前記ウイルスは、イネ黄葉ウイルスRTYVである、請求項1に記載の使用。前記抵抗性はイネ属植物に対して付与される、請求項1に記載の使用。前記抵抗性はイネに対して付与される、請求項1に記載の使用。ラブドウイルス科に属するウイルスのゲノムに存在するNP、P、P3またはP6のうち少なくとも1つの遺伝子の発現抑制剤を含む、ラブドウイルス科に属するウイルスまたはラブドウイルス科に属するウイルスが原因となる病変または疾患に対する抵抗性を付与するための組成物。前記NP、P、P3またはP6は、それぞれ配列番号1、3、5もしくは11に示すヌクレオチド配列、または該ヌクレオチド配列において1もしくは数個の置換、付加、挿入、および/もしくは欠失を有する改変配列を含むか、あるいはそれぞれ配列番号2、4、6もしくは12に示すアミノ酸配列、または該アミノ酸配列において1もしくは数個の置換、付加、挿入、および/もしくは欠失を有する改変配列を含むアミノ酸配列をコードする、請求項6に記載に記載の組成物。前記ウイルスは、イネ黄葉ウイルスRTYVである、請求項6に記載に記載の組成物。前記抵抗性はイネ属植物に対して付与される、請求項6に記載に記載の組成物。前記抵抗性はイネに対して付与される、請求項6に記載に記載の組成物。前記発現抑制剤は、前記遺伝子のRNAi、コサプレッション、リボザイム、キメラオリゴ、アンチセンスサプレッションを行うものか、前記遺伝子産物に対する抗体である、請求項6に記載の組成物。前記発現抑制剤は、前記遺伝子のRNAiであって、20塩基以上の長さを有する、請求項11に記載の組成物。前記RNAiの長さは約500塩基である、請求項12に記載の組成物。前記RNAiは、配列番号16、17、18、19および22からなる群より選択されるヌクレオチド配列または該ヌクレオチド配列において1または数個の置換、付加、挿入、および/または欠失を有する改変配列を有する、請求項13に記載の組成物。前記発現抑制剤は、前記遺伝子のRNAiでありa配列番号46に示される核酸配列からなるユビキチンプロモーター;bi配列番号1、3、5または11に示される核酸配列か、または配列番号2、4、6もしくは12に示すアミノ酸配列をコードする核酸配列;あるいはii配列番号1、3、5または11に示される核酸配列または配列番号2、4、6もしくは12に示すアミノ酸配列をコードする核酸配列において1または数個の置換、付加、挿入、および/または欠失を有する改変体、と相補的なアンチセンス配列;c配列番号45に示される核酸配列からなるトリミング配列;di配列番号1、3、5または11に示される核酸配列か、または配列番号2、4、6もしくは12に示すアミノ酸配列をコードする核酸配列;あるいはii配列番号1、3、5または11に示される核酸配列または配列番号2、4、6もしくは12に示すアミノ酸配列をコードする核酸配列において1または数個の置換、付加、挿入、および/または欠失を有する改変体、からなるセンス配列;ならびにeターミネーター配列、を含む、請求項6に記載の組成物。ラブドウイルス科に属するウイルスまたはラブドウイルス科に属するウイルスが原因となる病変または疾患に対する抵抗性を付与するための、ラブドウイルス科に属するウイルスのゲノムに存在するNP、P、P3またはP6のうち少なくとも1つの遺伝子の発現抑制剤。請求項16に記載の発現抑制剤を含む、ベクター。請求項17に記載のベクターを含む、植物細胞。請求項17に記載のベクターを含む、植物体。請求項17に記載のベクターを含む、種子。ラブドウイルス科に属するウイルスに対する抵抗性を示す、請求項19に記載の植物体。ラブドウイルス科に属するウイルスまたはラブドウイルス科に属するウイルスが原因となる疾患に対する耐性が付与された、ラブドウイルス科に属するウイルスに感染し得るイネ属植物を生産する方法であって、A請求項17に記載のベクターを提供する工程;B該ベクターを該植物の細胞に導入する工程;C該ベクターが導入された植物の細胞を選択する工程;およびD該選択された細胞を再分化させて、トランスジェニック植物を作出する工程;を包含する、方法。ラブドウイルス科に属するウイルスまたはラブドウイルス科に属するウイルスが原因となる疾患に対する耐性が付与された、ラブドウイルス科に属するウイルスに感染し得る植物のイネ属植物の種子を生産する方法であって、A請求項17に記載のベクターを提供する工程;B該ベクターを該植物の細胞に導入する工程;C該ベクターが導入された植物の細胞を選択する工程;D該選択された細胞を再分化させて、トランスジェニック植物を作出する工程;およびE該トランスジェニック植物から種子を得る工程;を包含する、方法。ラブドウイルス科に属するウイルスまたはラブドウイルス科に属するウイルスが原因となる疾患に対する耐性が付与された、ラブドウイルス科に属するウイルスに感染し得るイネ属植物を再生産する方法であって、A請求項17に記載のベクターを含む、種子を提供する工程;B該種子を生長させて、成熟した植物体を得る工程;C該植物体から、種子を得る工程、を包含する、方法。請求項16に記載の発現抑制剤を含む植物体または種子、あるいはその加工品。本発明者らが鋭意研究した結果、ラブドウイルス科に属するウイルス例えば、イネ黄葉ウイルスRTYVのゲノムに存在する少なくとも1つの遺伝子の発現抑制剤を含む、ラブドウイルス科に属するウイルスまたはラブドウイルス科に属するウイルスが原因となる疾患に対する抵抗性を付与するための組成物が、予想外に、完全な抵抗性を付与することを見出したことにより実用化に結びつく、ラブドウイルス科のウイルスに対して抵抗性植物の作出方法および抵抗性型品種を得ることに成功した。一般に、RNA干渉RNAiでは遺伝子の発現を完全に抑制することができないという共通認識が存在するRNAi実験なるほどQA,羊土社,2006年、pp.4。RTYVは、他のイネ病変の原因となるウイルスであるイネ萎縮病ウイルスRDVやイネ縞葉枯ウイルスRSVとは違い、1本のマイナス鎖RNAのゲノムの中に7つの遺伝子NP,P,P3,M,G,P6,Lが存在し、その部分からCAPおよびpolyAを持つmRNAが転写される。また、そのゲノムの両末端付近にleader配列、trailer配列と呼ばれる領域があり、その部分からはCAPおよびpolyAを持たないRNAが転写されているとされる。そこで、イネ黄葉ウイルスがコードする全遺伝子について個々の遺伝子を、従来ラブドウイルスに対する抵抗性付与に関する研究で通常行われている20数塩基で比較する方法ではなく、500塩基程度の長さで各遺伝子についてRNA干渉で発現抑制を試みたところ、NP、P、P3およびP6等を発現抑制させるとイネに抵抗性が付与されることが判明した。また本発明は、以下の項目を提供する。1ラブドウイルス科に属するウイルスのヌクレオタンパク質NP、ホスホタンパク質P、移行タンパク質P3またはP6タンパク質をコードする核酸配列の、ラブドウイルス科に属するウイルスに対する抵抗性を付与するための使用。2前記NP、P、P3またはP6は、それぞれ配列番号1、3、5もしくは11に示すヌクレオチド配列、または該ヌクレオチド配列において1もしくは数個の置換、付加、挿入、および/もしくは欠失を有する改変配列を含むか、あるいはそれぞれ配列番号2、4、6もしくは12に示すアミノ酸配列、または該アミノ酸配列において1もしくは数個の置換、付加、挿入、および/もしくは欠失を有する改変配列を含むアミノ酸配列をコードする、項目1に記載に記載の使用。3前記ウイルスは、イネ黄葉ウイルスRTYVである、項目1または2に記載の使用。4前記抵抗性はイネ属植物に対して付与される、項目1~3のいずれかに記載の使用。5前記抵抗性はイネに対して付与される、項目1~4のいずれかに記載の使用。6ラブドウイルス科に属するウイルスのゲノムに存在するNP、P、P3またはP6のうち少なくとも1つの遺伝子の発現抑制剤を含む、ラブドウイルス科に属するウイルスまたはラブドウイルス科に属するウイルスが原因となる病変または疾患に対する抵抗性を付与するための組成物。7前記NP、P、P3またはP6は、それぞれ配列番号1、3、5もしくは11に示すヌクレオチド配列、または該ヌクレオチド配列において1もしくは数個の置換、付加、挿入、および/もしくは欠失を有する改変配列を含むか、あるいはそれぞれ配列番号2、4、6もしくは12に示すアミノ酸配列、または該アミノ酸配列において1もしくは数個の置換、付加、挿入、および/もしくは欠失を有する改変配列を含むアミノ酸配列をコードする、項目6に記載に記載の組成物。8前記ウイルスは、イネ黄葉ウイルスRTYVである、項目6または7に記載に記載の組成物。9前記抵抗性はイネ属植物に対して付与される、項目6~8のいずれかに記載に記載の組成物。10前記抵抗性はイネに対して付与される、項目6~9のいずれかに記載に記載の組成物。11前記発現抑制剤は、前記遺伝子のRNAi、コサプレッション、リボザイム、キメラオリゴ、アンチセンスサプレッションを行うものか、前記遺伝子産物に対する抗体である、項目6~10のいずれかに記載の組成物。12前記発現抑制剤は、前記遺伝子のRNAiであって、20塩基以上の長さを有する、項目11に記載の組成物。12A前記発現抑制剤は、前記遺伝子のRNAiであって、30塩基以上の長さを有する、項目11に記載の組成物。13前記RNAiの長さは約500塩基である、項目12に記載の組成物。14前記RNAiは、配列番号16、17、18、19および22からなる群より選択されるヌクレオチド配列または該ヌクレオチド配列において1または数個の置換、付加、挿入、および/または欠失を有する改変配列を有する、項目13に記載の組成物。15前記発現抑制剤は、前記遺伝子のRNAiでありa配列番号46に示される核酸配列からなるユビキチンプロモーター;bi配列番号1、3、5または11に示される核酸配列か、または配列番号2、4、6もしくは12に示すアミノ酸配列をコードする核酸配列;あるいはii配列番号1、3、5または11に示される核酸配列または配列番号2、4、6もしくは12に示すアミノ酸配列をコードする核酸配列において1または数個の置換、付加、挿入、および/または欠失を有する改変体、と相補的なアンチセンス配列;c配列番号45に示される核酸配列からなるトリミング配列;di配列番号1、3、5または11に示される核酸配列か、または配列番号2、4、6もしくは12に示すアミノ酸配列をコードする核酸配列;あるいはii配列番号1、3、5または11に示される核酸配列または配列番号2、4、6もしくは12に示すアミノ酸配列をコードする核酸配列において1または数個の置換、付加、挿入、および/または欠失を有する改変体、からなるセンス配列;ならびにeターミネーター配列、を含む、項目6~14のいずれかに記載の組成物。16ラブドウイルス科に属するウイルスまたはラブドウイルス科に属するウイルスが原因となる病変または疾患に対する抵抗性を付与するための、ラブドウイルス科に属するウイルスのゲノムに存在するNP、P、P3またはP6のうち少なくとも1つの遺伝子の発現抑制剤。17項目16に記載の発現抑制剤を含む、ベクター。18項目17に記載のベクターを含む、植物細胞。19項目17に記載のベクターを含む、植物体。20項目17に記載のベクターを含む、種子。21ラブドウイルス科に属するウイルスに対する抵抗性を示す、項目19に記載の植物体。22ラブドウイルス科に属するウイルスまたはラブドウイルス科に属するウイルスが原因となる疾患に対する耐性が付与された、ラブドウイルス科に属するウイルスに感染し得るイネ属植物を生産する方法であって、A項目17に記載のベクターを提供する工程;B該ベクターを該植物の細胞に導入する工程;C該ベクターが導入された植物の細胞を選択する工程;およびD該選択された細胞を再分化させて、トランスジェニック植物を作出する工程;を包含する、方法。23ラブドウイルス科に属するウイルスまたはラブドウイルス科に属するウイルスが原因となる疾患に対する耐性が付与された、ラブドウイルス科に属するウイルスに感染し得る植物のイネ属植物の種子を生産する方法であって、A項目17に記載のベクターを提供する工程;B該ベクターを該植物の細胞に導入する工程;C該ベクターが導入された植物の細胞を選択する工程;D該選択された細胞を再分化させて、トランスジェニック植物を作出する工程;およびE該トランスジェニック植物から種子を得る工程;を包含する、方法。24ラブドウイルス科に属するウイルスまたはラブドウイルス科に属するウイルスが原因となる疾患に対する耐性が付与された、ラブドウイルス科に属するウイルスに感染し得るイネ属植物を再生産する方法であって、A項目17に記載のベクターを含む、種子を提供する工程;B該種子を生長させて、成熟した植物体を得る工程;C該植物体から、種子を得る工程、を包含する、方法。25項目16に記載の発現抑制剤を含む植物体または種子、あるいはその加工品。上記のように、本発明によって、ラブドウイルス科のウイルスの、ヌクレオタンパク質NP、ホスホタンパク質P、移行タンパク質P3またはP6タンパク質の遺伝子をコードする分節ゲノムを標的とした発現抑制剤を含む組成物が提供され、好ましくは、完全抵抗性を持つ集団ラブドウイルス科のウイルス感染植物体の個体数総計に対して100が抵抗性を示す、少なくとも、部分的な抵抗性を持つ集団ラブドウイルス科のウイルス感染率が野生型の植物と比較して低下するが提供され、また、安定した抵抗性が付与されたラブドウイルス科のウイルス抵抗型イネの作出方法および抵抗型品種が提供される。本発明により、よりウイルス感染抑制あるいは無病徴のレベルの高い抵抗性を示し、または安定した抵抗性が付与されたラブドウイルス科のウイルス抵抗型イネの作出方法および抵抗型品種が提供される。以下、本発明を説明する。本明細書の全体にわたり、単数形の表現は、特に言及しない限り、その複数形の概念をも含むことが理解されるべきである。従って、単数形の冠詞または形容詞例えば、英語の場合はa、an、theなどは、特に言及しない限り、その複数形の概念をも含むことが理解されるべきである。また、本明細書において使用される用語は、特に言及しない限り、当該分野で通常用いられる意味で用いられることが理解されるべきである。したがって、他に定義されない限り、本明細書中で使用される全ての専門用語および科学技術用語は、本発明の属する分野の当業者によって一般的に理解されるのと同じ意味を有する。矛盾する場合、本明細書定義を含めてが優先する。用語の定義以下に本明細書において特に使用される用語の定義を列挙する。本明細書においてイネ黄葉ウイルスとは、RTYVともいわれ、ラブドウイルス科に属するウイルスのメンバーである。このウイルス粒子の形状は、幅が100nmで長さが180~210nmの弾丸状粒子である。また、このウイルスは1本のマイナス鎖RNAをゲノムとし、そのゲノム配列は配列番号25に示す。、このマイナス鎖に7種のタンパク質NP、P、P3、M、G、P6およびLをコードしている。RTYV粒子は、ゲノムRNA、NP、P、M、G、P6およびLから成るとされている。このウイルスは、イネ科の植物に分布している。また、本発明において例示され実施例1において使用したRTYV日本株とは別に、中国で分離された同種のウイルス株はRiceyellowstuntvirusRYSVと命名されており以下中国株RYSVとする、同様にRTYVには多くの系統および変種系統が存在することが予想される。従って、本明細書において使用される場合、用語RTYVは、当然のことながら、この用語がRTYVの種々の系統および変種系統も意図していることは、当業者であれば容易に明らかである。RTYV日本株全長の標的配列と中国株RYSV全長の塩基配列を比較したところ、1.5の違いが認められた。この程度の置換があるとしても、最低限発現抑制が起こる塩基長、すなわち、24ヌクレオチド以上実質的に一致した部分塩基配列が他の系統もしくは変異株間に存在していれば、ある1種の系統に由来する分節ゲノムを含む本発明の発現抑制剤は、別の1種の系統においても、その効果を発揮し得る。他方、RTYVのどの株由来の配列を用いたとしても、当業者は本明細書の記載に基づいて他の株に対しても効果を有するsiRNAなどの発現抑制剤を製造することができることが理解される。本明細書においてウイルスの系統および株は、同じウイルス種内でのバリエーションをいうために使用され得るが、これらの用語は、交換可能に使用され得ることが理解される。RTYVについて、本明細書においてNPとは、1配列番号1に示される核酸配列または配列番号2に示されるアミノ酸配列をコードする核酸配列;2上記核酸配列と中程度または高程度にあるいは任意の程度のストリンジェントな条件下でハイブリダイズする核酸配列と相補的な配列;3上記核酸配列において1もしくは数個のヌクレオチドの置換、付加、挿入および/もしくは欠失を有する改変体または上記アミノ酸配列において1もしくは数個のアミノ酸の置換、付加、挿入および/もしくは欠失を有する改変体;4上記核酸配列と少なくとも90の同一性を有する改変体;5上記核酸配列に対して少なくとも80以上の相同性を有する改変体;6RTYVの他の系統もしくは変種株に由来するNPをコードする核酸配列によって示される、マイナス鎖のRTYVゲノム上に存在する。上記の同一性または相同性は、配列分析用ツールであるBLAST例えば、BLAST2.2.92004.5.12発行を用いてデフォルトパラメータを用いて算出される。ストリンジェントな条件は配列に依存して変化し、このような条件の決定は、当業者の技術範囲内である。NPによってコードされるタンパク質は、ゲノムRNAと結合しヌクレオキャプシド構造をつくるヌクレオタンパク質。また、NPによってコードされるタンパク質は、RNA合成において、複製酵素と相互作用し、その役割を果たす。RTYVについて、本明細書においてPとは、1配列番号3に示される核酸配列または配列番号4に示されるアミノ酸配列をコードする核酸配列;2上記核酸配列と中程度または高程度にあるいは任意の程度のストリンジェントな条件下でハイブリダイズする核酸配列と相補的な配列;3上記核酸配列において1もしくは数個のヌクレオチドの置換、付加、挿入および/もしくは欠失を有する改変体または上記アミノ酸配列において1もしくは数個のアミノ酸の置換、付加、挿入および/もしくは欠失を有する改変体;4上記核酸配列と少なくとも90の同一性を有する改変体;5上記核酸配列に対して少なくとも80以上の相同性を有する改変体;6RTYVの他の系統もしくは変種株に由来するPをコードする核酸配列によって示される、マイナス鎖のRTYVゲノム上に存在する。上記の同一性または相同性は、配列分析用ツールであるBLAST例えば、BLAST2.2.92004.5.12発行を用いてデフォルトパラメータを用いて算出される。ストリンジェントな条件は配列に依存して変化し、このような条件の決定は、当業者の技術範囲内である。Pによってコードされるタンパク質は、構造タンパク質ホスホタンパク質として機能する。また、Pによってコードされるタンパク質は、RNA合成において、複製酵素と相互作用し、その役割を果たす。RTYVについて、本明細書においてP3とは、1配列番号5に示される核酸配列または配列番号6に示されるアミノ酸配列をコードする核酸配列;2上記核酸配列と中程度または高程度にあるいは任意の程度のストリンジェントな条件下でハイブリダイズする核酸配列と相補的な配列;3上記核酸配列において1もしくは数個のヌクレオチドの置換、付加、挿入および/もしくは欠失を有する改変体または上記アミノ酸配列において1もしくは数個のアミノ酸の置換、付加、挿入および/もしくは欠失を有する改変体;4上記核酸配列と少なくとも90の同一性を有する改変体;5上記核酸配列に対して少なくとも80以上の相同性を有する改変体;6RTYVの他の系統もしくは変種株に由来するP3をコードする核酸配列によって示される、マイナス鎖のRTYVゲノム上に存在する。上記の同一性または相同性は、配列分析用ツールであるBLAST例えば、BLAST2.2.92004.5.12発行を用いてデフォルトパラメータを用いて算出される。ストリンジェントな条件は配列に依存して変化し、このような条件の決定は、当業者の技術範囲内である。P3によってコードされるタンパク質は、移行タンパク質として機能し、RTYVの感染細胞に隣接する細胞への移行において、その役割を果たす。RTYVについて、本明細書においてMとは、1配列番号7に示される核酸配列または配列番号8に示されるアミノ酸配列をコードする核酸配列;2上記核酸配列と中程度または高程度にあるいは任意の程度のストリンジェントな条件下でハイブリダイズする核酸配列と相補的な配列;3上記核酸配列において1もしくは数個のヌクレオチドの置換、付加、挿入および/もしくは欠失を有する改変体または上記アミノ酸配列において1もしくは数個のアミノ酸の置換、付加、挿入および/もしくは欠失を有する改変体;4上記核酸配列と少なくとも90の同一性を有する改変体;5上記核酸配列に対して少なくとも80以上の相同性を有する改変体;6RTYVの他の系統もしくは変種株に由来するMをコードする核酸配列によって示される、マイナス鎖のRTYVゲノム上に存在する。上記の同一性または相同性は、配列分析用ツールであるBLAST例えば、BLAST2.2.92004.5.12発行を用いてデフォルトパラメータを用いて算出される。ストリンジェントな条件は配列に依存して変化し、このような条件の決定は、当業者の技術範囲内である。Mによってコードされるタンパク質は、構造タンパク質として機能し、粒子の形を形成する過程において、その役割を果たす。RTYVについて、本明細書においてGとは、1配列番号9に示される核酸配列または配列番号10に示されるアミノ酸配列をコードする核酸配列;2上記核酸配列と中程度または高程度にあるいは任意の程度のストリンジェントな条件下でハイブリダイズする核酸配列と相補的な配列;3上記核酸配列において1もしくは数個のヌクレオチドの置換、付加、挿入および/もしくは欠失を有する改変体または上記アミノ酸配列において1もしくは数個のアミノ酸の置換、付加、挿入および/もしくは欠失を有する改変体;4上記核酸配列と少なくとも90の同一性を有する改変体;5上記核酸配列に対して少なくとも80以上の相同性を有する改変体;6RTYVの他の系統もしくは変種株に由来するGをコードする核酸配列によって示される、マイナス鎖のRTYVゲノム上に存在する。上記の同一性または相同性は、配列分析用ツールであるBLAST例えば、BLAST2.2.92004.5.12発行を用いてデフォルトパラメータを用いて算出される。ストリンジェントな条件は配列に依存して変化し、このような条件の決定は、当業者の技術範囲内である。Gによってコードされるタンパク質は、構造タンパク質として機能する。また、Gによってコードされるタンパク質は、粒子形成、およびウイルスの宿主細胞への侵入において、その役割を果たす。RTYVについて、本明細書においてP6とは、1配列番号11に示される核酸配列または配列番号12に示されるアミノ酸配列をコードする核酸配列;2上記核酸配列と中程度または高程度にあるいは任意の程度のストリンジェントな条件下でハイブリダイズする核酸配列と相補的な配列;3上記核酸配列において1もしくは数個のヌクレオチドの置換、付加、挿入および/もしくは欠失を有する改変体または上記アミノ酸配列において1もしくは数個のアミノ酸の置換、付加、挿入および/もしくは欠失を有する改変体;4上記核酸配列と少なくとも90の同一性を有する改変体;5上記核酸配列に対して少なくとも80以上の相同性を有する改変体;6RTYVの他の系統もしくは変種株に由来するP6をコードする核酸配列によって示される、マイナス鎖のRTYVゲノム上に存在する。上記の同一性または相同性は、配列分析用ツールであるBLAST例えば、BLAST2.2.92004.5.12発行を用いてデフォルトパラメータを用いて算出される。ストリンジェントな条件は配列に依存して変化し、このような条件の決定は、当業者の技術範囲内である。P6によってコードされるタンパク質は、構造タンパク質として機能するが、その役割は不明である。RTYVについて、本明細書においてLとは、1配列番号13に示される核酸配列または配列番号14に示されるアミノ酸配列をコードする核酸配列;2上記核酸配列と中程度または高程度にあるいは任意の程度のストリンジェントな条件下でハイブリダイズする核酸配列と相補的な配列;3上記核酸配列において1もしくは数個のヌクレオチドの置換、付加、挿入および/もしくは欠失を有する改変体または上記アミノ酸配列において1もしくは数個のアミノ酸の置換、付加、挿入および/もしくは欠失を有する改変体;4上記核酸配列と少なくとも90の同一性を有する改変体;5上記核酸配列に対して少なくとも80以上の相同性を有する改変体;6RTYVの他の系統もしくは変種株に由来するLをコードする核酸配列によって示される、マイナス鎖のRTYVゲノム上に存在する。上記の同一性または相同性は、配列分析用ツールであるBLAST例えば、BLAST2.2.92004.5.12発行を用いてデフォルトパラメータを用いて算出される。ストリンジェントな条件は配列に依存して変化し、このような条件の決定は、当業者の技術範囲内である。Lによってコードされるタンパク質は、RTYVの粒子に付随されるタンパク質である。また、Lによってコードされるタンパク質は、RNA複製酵素として機能し、RTYVのRNA合成において、その主たる役割を果たす。本明細書において、ウイルス例えば、RTYV等のラブドウイルス科のウイルス等に対する抵抗性または耐性とは、ウイルス等が侵入しようとする宿主生体本明細書では、植物が、ウイルス等の侵入に対して抵抗力を持つことをいう。本明細書では、抵抗力とは、宿主生体の通常の生存増殖が維持される程度の性質のことをいう。その評価手法は、本明細書において以下に規定され、本明細書では特に断らない限り、この評価手法によって抵抗性かどうかが判断される。本明細書において、病害例えば、ラブドウイルス科のウイルス病としてイネ黄葉病イネトランジトリーイエローイング病等に対する耐性または抵抗性とは、その病害に対して宿主生体本明細書では、植物が抵抗力を持つことをいう。従って、ウイルスの侵入の如何にかかわらず、植物体の生長、目的物質の収量において、変化が見られない限り、病害に対する耐性はあるといえる。病害についてもその評価手法は、本明細書において以下に規定され、本明細書では特に断らない限り、この評価手法によって抵抗性かどうかが判断される。本明細書において、病害に対する抵抗性は、病害を引き起こす原因因子例えば、RTYVに感染する機会が与えられた場合において、その原因因子の感染または増殖が認められず、その原因因子の感染していない植物体非感染植物体と比較して、植物体の生長例えば、分けつ、伸長、目的物質の収量において、非感染生物体と何ら変化が見られないことを検定および観察することによって判定することができる。さらに感受性は、目的の植物体に上記病原体を感染させたときに、野生型の感染植物体との違いが認められないことを検定および観察することによって判定することができる。病害に対する完全抵抗性とは、目的の植物集団に対して上記病原体に感染する機会が与えられた場合において、その全てが抵抗性であった場合をいう。また、部分的な抵抗性とは、目的の植物集団に対して上記病原体に感染する機会が与えられた場合において、野生型植物集団に対して同様に上記病原体に感染する機会が与えられた場合と比較して、感受性が出現する割合が低くなる事をいう。本明細書では、感染に失敗した個体すなわち、ツマグロヨコバイが吸汁したにも拘わらず、発病に至らなかったものを除くことによって病原体に対する抵抗性を正しく評価するために、野生型植物集団において感受性が出現する率を100とした時の目的の植物集団における感受性が出現する率を計算し、この率が100以下のXとなる場合、目的の植物集団はXの部分的な抵抗性を持つという。本明細書において、安定した抵抗性とは、複数の世代において保持される抵抗性をいう。複数の世代において保持されるとは、好ましくは3世代、より好ましくは5世代、さらにより好ましくは7世代、最も好ましくは永久に保持されることを意味する。本明細書では、特に言及するときは、抵抗性は、ウイルスに対する性質をいい、耐性は病害に対する性質をいうが、交換可能に使用され得ることが理解される。本明細書において、植物は、単子葉植物および双子葉植物のいずれも含む。通常、本明細書では、RTYVが感染する植物を指す。好ましい植物は、イネ科に属する単子葉植物であり、本発明にとって最も好ましい植物は、イネである。特に他で示さない限り、植物は、植物体、植物器官、植物組織、植物細胞、および種子のいずれをも意味する。植物器官の例としては、根、葉、茎、および花などが挙げられる。植物組織の例としては、維管束組織篩部組織、木部組織などを含む、頂端分裂組織、葉肉組織、厚角組織、柔組織などが挙げられる。植物細胞の例としては、カルスおよび懸濁培養細胞が挙げられる。本明細書において野生型植物とは、形質転換などの人為的手段による遺伝的改変がなされていない天然に存在する植物をいう。本明細書において生物の器官とは、生物個体のある機能が個体内の特定の部分に局在して営まれ,かつその部分が形態的に独立性をもっている構造体をいう。例えば、茎、根、葉、花、種子などを挙げることができるがそれらに限定されない。本明細書において、生物の組織とは、細胞の集団であって、その集団において一定の同様の作用を有するものをいう。従って、組織は、器官の一部であり得る。器官内では、同じ働きを有する細胞を有することが多いが、微妙に異なる働きを有するものが混在することもあることから、本明細書において組織は、一定の特性を共有する限り、種々の細胞を混在して有していてもよい。本明細書においてポリヌクレオチド、オリゴヌクレオチドおよび核酸は、本明細書において同じ意味で使用され、任意の長さのヌクレオチドのポリマーをいう。この用語はまた、オリゴヌクレオチド誘導体またはポリヌクレオチド誘導体を含む。オリゴヌクレオチド誘導体またはポリヌクレオチド誘導体とは、ヌクレオチドの誘導体を含むか、またはヌクレオチド間の結合が通常とは異なるオリゴヌクレオチドまたはポリヌクレオチドをいい、互換的に使用される。そのようなオリゴヌクレオチドとして具体的には、例えば、2’-O-メチル-リボヌクレオチド、オリゴヌクレオチド中のリン酸ジエステル結合がホスホロチオエート結合に変換されたオリゴヌクレオチド誘導体、オリゴヌクレオチド中のリン酸ジエステル結合がN3’-P5’ホスホロアミデート結合に変換されたオリゴヌクレオチド誘導体、オリゴヌクレオチド中のリボースとリン酸ジエステル結合とがペプチド核酸結合に変換されたオリゴヌクレオチド誘導体、オリゴヌクレオチド中のウラシルがC-5プロピニルウラシルで置換されたオリゴヌクレオチド誘導体、オリゴヌクレオチド中のウラシルがC-5チアゾールウラシルで置換されたオリゴヌクレオチド誘導体、オリゴヌクレオチド中のシトシンがC-5プロピニルシトシンで置換されたオリゴヌクレオチド誘導体、オリゴヌクレオチド中のシトシンがフェノキサジン修飾シトシンphenoxazinemodifiedcytosineで置換されたオリゴヌクレオチド誘導体、DNA中のリボースが2’-O-プロピルリボースで置換されたオリゴヌクレオチド誘導体およびオリゴヌクレオチド中のリボースが2’-メトキシエトキシリボースで置換されたオリゴヌクレオチド誘導体などが例示される。他にそうではないと示されなければ、特定の核酸配列はまた、明示的に示された配列と同様に、その保存的に改変された改変体例えば、縮重コドン置換体および相補配列を包含することが企図される。具体的には、縮重コドン置換体は、1またはそれ以上の選択されたまたは、すべてのコドンの3番目の位置が混合塩基および/またはデオキシイノシン残基で置換された配列を作成することにより達成され得るBatzerら、NucleicAcidRes.19:5081;Ohtsukaら、J.Biol.Chem.260:26052608;Rossoliniら、Mol.Cell.Probes8:9198。本明細書では核酸分子もまた、核酸、オリゴヌクレオチドおよびポリヌクレオチドと互換可能に使用され、cDNA、mRNA、ゲノムDNA、siRNA、shRNA,RNAとDNAとの複合分子などを含む。本明細書では、核酸および核酸分子は、用語遺伝子の概念に含まれ得る。本明細書において、遺伝子とは、遺伝形質を規定する因子をいう。通常ゲノム上に一定の順序に配列している。タンパク質の一次構造を規定するものを構造遺伝子といい、その発現を左右するものを調節遺伝子たとえば、プロモーターという。本明細書では、遺伝子は、特に言及しない限り、構造遺伝子および調節遺伝子を包含する。したがって、遺伝子というときは、通常、本発明の遺伝子の構造遺伝子ならびにそのプロモーターなどの転写および/または翻訳の調節配列の両方を包含する。本明細書では、遺伝子は、ポリヌクレオチド、オリゴヌクレオチド、核酸および核酸分子を指すことがある。本明細書においてはまた、遺伝子産物は、遺伝子によって発現されたタンパク質、ポリペプチド等のほか、遺伝子によって発現されたポリヌクレオチド、オリゴヌクレオチド、核酸および核酸分子を包含する。当業者であれば、遺伝子産物が何たるかはその状況に応じて理解することができる。本明細書において、アミノ酸は、本発明の目的を満たす限り、天然のものでも非天然のものでもよい。本明細書においてヌクレオチドは、天然のものでも非天然のものでもよい。ヌクレオチドの配列は、本明細書においてヌクレオチド配列または塩基配列という。本明細書においてヌクレオチド誘導体またはヌクレオチドアナログとは、天然に存在するヌクレオチドとは異なるがもとのヌクレオチドと同様の機能を有するものをいう。そのようなヌクレオチド誘導体およびヌクレオチドアナログは、当該分野において周知である。そのようなヌクレオチド誘導体およびヌクレオチドアナログの例としては、ホスホロチオエート、ホスホルアミデート、メチルホスホネート、キラルメチルホスホネート、2-O-メチルリボヌクレオチド、ペプチド-核酸PNAが含まれるが、これらに限定されない。本明細書では、ヌクレオチド誘導体およびヌクレオチドアナログは、ヌクレオチドと同じ生物学的機能、特にRNAiの機能を果たす限り、ヌクレオチドの代替として使用され得ることが理解される。アミノ酸は、その一般に公知の3文字記号か、またはIUPACIUBBiochemicalNomenclatureCommissionにより推奨される1文字記号のいずれかにより、本明細書中で言及され得る。ヌクレオチドも同様に、一般に認知された1文字コードにより言及され得る。本明細書では、アミノ酸配列および塩基配列の類似性、同一性および相同性の比較は、配列分析用ツールであるBLASTを用いてデフォルトパラメータを用いて算出される。同一性の検索は例えば、NCBIのBLAST2.2.92004.5.12発行を用いて行うことができる。本明細書における同一性の値は通常は上記BLASTを用い、デフォルトの条件でアラインした際の値をいう。ただし、パラメーターの変更により、より高い値が出る場合は、最も高い値を同一性の値とする。複数の領域で同一性が評価される場合はそのうちの最も高い値を同一性の値とする。本明細書において、対応するヌクレオチドとは、ある核酸分子またはポリヌクレオチド分子において、比較の基準となる核酸分子またはポリヌクレオチドにおける所定のヌクレオチドと同様の作用を有するか、または有することが予測されるヌクレオチドをいい、RNAiにあっては、RNA干渉作用において、同様の寄与をするヌクレオチドをいう。アンチセンス分子であれば、そのアンチセンス分子の特定の部分に対応するオルソログにおける同様の部分であり得る。本明細書において、対応する遺伝子とは、ある種において、比較の基準となる種における所定の遺伝子と同様の作用を有するか、または有することが予測される遺伝子をいい、そのような作用を有する遺伝子が複数存在する場合、進化学的に同じ起源を有するものをいう。従って、ある遺伝子例えば、RTYVのNP、P、P3、P6等に対応する遺伝子は、その遺伝子のオルソログであり得る。したがって、ウイルスの遺伝子に対応する遺伝子は、他のウイルスラブドウイルス科の他のウイルスなどにおいても見出すことができる。そのような対応する遺伝子は、当該分野において周知の技術を用いて同定することができる。したがって、例えば、あるウイルスにおける対応する遺伝子は、対応する遺伝子の基準となる遺伝子の配列をクエリ配列として用いてそのウイルス例えば、ラブドウイルス科の他のウイルスの配列データベースを検索することによって見出すことができる。本明細書においてフラグメントとは、全長のポリペプチドまたはポリヌクレオチド長さがnに対して、1~n-1までの配列長さを有するポリペプチドまたはポリヌクレオチドをいう。フラグメントの長さは、その目的に応じて、適宜変更することができ、例えば、その長さの下限としては、ポリペプチドの場合、3、4、5、6、7、8、9、10、15,20、25、30、40、50、75、100、150、200、250およびそれ以上のアミノ酸が挙げられ、ここの具体的に列挙していない整数で表される長さ例えば、11などもまた、下限として適切であり得る。また、ポリヌクレオチドの場合、5、6、7、8、9、10、15,20、25、30、40、50、75、100、200、300、400、500およびそれ以上のヌクレオチドが挙げられ、ここの具体的に列挙していない整数で表される長さ例えば、11などもまた、下限として適切であり得る。本明細書において、ポリペプチドおよびポリヌクレオチドの長さは、上述のようにそれぞれアミノ酸または核酸の個数で表すことができるが、上述の個数は絶対的なものではなく、同じ機能を有する限り、上限または下限としての上述の個数は、その個数の上下数個または例えば上下10のものも含むことが意図される。そのような意図を表現するために、本明細書では、個数の前に約を付けて表現することがある。しかし、本明細書では、約のあるなしはその数値の解釈に影響を与えないことが理解されるべきである。本明細書において有用なフラグメントの長さは、そのフラグメントの基準となる全長タンパク質の機能のうち少なくとも1つの機能が保持されているかどうかによって決定され得る。本明細書において生物学的機能とは、ある遺伝子またはそれに関する核酸分子もしくはポリペプチドについて言及するとき、その遺伝子、核酸分子またはポリペプチドが生体内において有し得る特定の機能をいい、これには、例えば、特異的な抗体の生成、酵素活性、抵抗性の付与等を挙げることができるがそれらに限定されない。本発明においては、これらのタンパク質自体の機能のほか、例えば、植物におけるラブドウイルス科のウイルスの増殖への関与、ラブドウイルス科のウイルスに対する抵抗性または感受性への関与、ラブドウイルス科のウイルス病に対する耐性、これらの具体的な機能について直接的または間接的に関連する機能例えば、ウイルスタンパク質との結合などなどを挙げることができるがそれらに限定されない。本明細書において、生物学的機能は、生物学的活性によって発揮され得る。本明細書において生物学的活性とは、ある因子例えば、ポリヌクレオチド、タンパク質などが、生体内において有し得る活性のことをいい、種々の機能例えば、ウイルスタンパク質との結合などを発揮する活性が包含され、例えば、ある分子との相互作用によって別の分子が活性化または不活化される活性も包含される。2つの因子が相互作用する場合、その生物学的活性は、その二分子との間の結合およびそれによって生じる生物学的変化、例えば、一つの分子を抗体を用いて沈降させたときに他の分子も共沈するとき、2分子は結合していると考えられる。したがって、そのような共沈を見ることが一つの判断手法として挙げられる。例えば、ある因子が酵素である場合、その生物学的活性は、その酵素活性を包含する。別の例では、ある因子がリガンドである場合、そのリガンドが対応するレセプターへの結合を包含する。そのような生物学的活性は、当該分野において周知の技術によって測定することができる。したがって、活性は、結合直接的または間接的のいずれかを示すかまたは明らかにするか;応答に影響するすなわち、いくらかの曝露または刺激に応答する測定可能な影響を有する、種々の測定可能な指標をいい、例えば、ポリペプチドまたはポリヌクレオチドに直接結合する化合物の親和性、または例えば、いくつかの刺激後または事象後の上流または下流のタンパク質の量あるいは他の類似の機能の尺度が、挙げられる。本明細書において相互作用とは、2つの物質についていうとき、一方の物質と他方の物質との間で力例えば、分子間力ファンデルワールス力、水素結合、疎水性相互作用などを及ぼし合うこという。通常、相互作用をした2つの物質は、会合または結合している状態にある。本明細書中で使用される用語結合は、2つのタンパク質もしくは化合物または関連するタンパク質もしくは化合物の間、あるいはそれらの組み合わせの間での、物理的相互作用または化学的相互作用を意味する。結合には、イオン結合、非イオン結合、水素結合、ファンデルワールス結合、疎水性相互作用などが含まれる。物理的相互作用結合は、直接的または間接的であり得、間接的なものは、別のタンパク質または化合物の効果を介するかまたは起因する。直接的な結合とは、別のタンパク質または化合物の効果を介してもまたはそれらに起因しても起こらず、他の実質的な化学中間体を伴わない、相互作用をいう。本明細書中で使用される用語調節するmodulateまたは改変するmodifyは、特定の活性、因子またはタンパク質の量、質または効果における増加または減少あるいは維持を意味する。本明細書においてアンチセンス活性とは、標的遺伝子の発現を特異的に抑制または低減することができる活性をいう。アンチセンス活性は、通常、目的とする遺伝子の核酸配列の全部または一部、あるいは上記の核酸配列と少なくとも90の同一性を有する核酸配列と相補的な、少なくとも8の連続するヌクレオチド長の核酸配列によって達成される。そのような核酸配列は、好ましくは、少なくとも9の連続するヌクレオチド長の、より好ましく少なくとも10の連続するヌクレオチド長の、さらに好ましくは少なくとも11の連続するヌクレオチド長の、少なくとも12の連続するヌクレオチド長の、少なくとも13の連続するヌクレオチド長の、少なくとも14の連続するヌクレオチド長の、少なくとも15の連続するヌクレオチド長の、少なくとも20の連続するヌクレオチド長の、少なくとも25の連続するヌクレオチド長の、少なくとも30の連続するヌクレオチド長の、少なくとも40の連続するヌクレオチド長の、少なくとも50の連続するヌクレオチド長の、少なくとも100の連続するヌクレオチド長の、少なくとも200の連続するヌクレオチド長の、少なくとも300の連続するヌクレオチド長の、少なくとも400の連続するヌクレオチド長の、少なくとも500の連続するヌクレオチド長の、核酸配列であり得る。そのような核酸配列を有する分子を本明細書においてアンチセンス分子、アンチセンス核酸分子またはアンチセンス核酸と称し、これらは互換的に使用される。そのような核酸配列には、上述の配列に対して、少なくとも70相同な、より好ましくは、少なくとも80相同な、さらに好ましくは、90相同な、もっとも好ましくは95相同な核酸配列が含まれる。そのようなアンチセンス活性は、目的とする遺伝子の核酸配列の5’末端の配列に対して相補的であることが好ましい。そのようなアンチセンスの核酸配列には、上述の配列に対して、1つまたは数個あるいは1つ以上のヌクレオチドの置換、付加、挿入および/または欠失を有するものもまた含まれる。本明細書中で開示される核酸配列例えば、配列番号1が与えられれば、本発明のアンチセンス核酸は、WatsonおよびCrick塩基対形成の法則またはHoogsteen塩基対形成の法則に従い設計され得る。アンチセンス核酸分子は、シグナル伝達因子のmRNAの全コード領域に相補的であり得るが、より好ましくは、mRNAのコード領域または非コード領域の一部のみに対してアンチセンスであるオリゴヌクレオチドである。例えば、アンチセンスオリゴヌクレオチドは、mRNAの翻訳開始部位の周辺の領域に相補的であり得る。アンチセンスオリゴヌクレオチドは、例えば、約5、約10、約15、約20、約25、約30、約35、約40、約45、または約50ヌクレオチド長であり得る。1つの好ましい実施形態では、本発明の発現抑制剤において使用されるアンチセンス核酸は、その長さの下限において少なくとも約100ヌクレオチド、少なくとも約150ヌクレオチド、少なくとも約200ヌクレオチド、少なくとも約250ヌクレオチド、少なくとも約300ヌクレオチド、少なくとも約350ヌクレオチド、好ましくは、少なくとも約400ヌクレオチド、より好ましくは少なくとも約450ヌクレオチド、最も好ましくは少なくとも約500ヌクレオチドの長さであり得るが、これらの長さに限定されず、約100ヌクレオチド~約500ヌクレオチドの間のいずれの長さであってもよい;上記アンチセンス核酸は、その長さの上限においては、たとえば、約1050ヌクレオチドまで、約1100ヌクレオチドまで、約1200ヌクレオチドまで、約1300ヌクレオチドまで、約1400ヌクレオチドまで、約1500ヌクレオチドまで、約2000ヌクレオチドまで、または約2500ヌクレオチドの長さ、あるいは対象となる核酸の全長であり得るが、これらの長さに限定されず、約500~全長までの間の何れの長さであってもよい。理論に束縛されることを望まないが、標的遺伝子を上記範囲たとえば、500塩基程度に設計することによって、ウイルス系統間で幅広くアンチセンス現象に基づく遺伝子発現抑制効果を誘起させることができると考えられるからである。本発明のアンチセンス核酸は、当該分野で公知の手順を用いて、化学合成または酵素的連結反応を用いて構築され得る。例えば、アンチセンス核酸例えば、アンチセンスオリゴヌクレオチドは、天然に存在するヌクレオチド、またはその分子の生物学的安定性を増加させるかもしくはアンチセンス核酸とセンス核酸との間で形成された二本鎖の物理的安定性を増加させるように設計された種々の改変ヌクレオチドを用いて例えば、ホスホロチオエート誘導体およびアクリジン置換ヌクレオチドが使用され得る化学合成され得る。アンチセンス核酸を生成するために使用され得る改変ヌクレオチドの例として、5-フルオロウラシル、5-ブロモウラシル、5-クロロウラシル、5-ヨードウラシル、ヒポキサンチン、キサンチン、4-アセチルシトシン、5-カルボキシヒドロキシメチルウラシル、5-カルボキシメチルアミノメチル-2-チオウリジン、5-カルボキシメチルアミノメチルウラシル、ジヒドロウラシル、β-D-ガラクトシルキューオシンqueosine、イノシン、N6-イソペンテニルアデニン、1-メチルグアニン、1-メチルイノシン、2,2-ジメチルグアニン、2-メチルアデニン、2-メチルグアニン、3-メチルシトシン、5-メチルシトシン、N6-アデニン、7-メチルグアニン、5-メチルアミノメチルウラシル、5-メトキシアミノメチル-2-チオウラシル、β-D-マンノシルキューオシン、5’-メトキシカルボキシメチルウラシル、5-メトキシウラシル、2-メチルチオ-N6-イソペンテニルアデニン、ウラシル-5-オキシ酢酸v、ワイブトキシンwybutoxosine、プソイドウラシル、キューオシン、2-チオシトシン、5-メチル-2-チオウラシル、2-チオウラシル、4-チオウラシル、5-メチルウラシル、ウラシル-5-オキシ酢酸メチルエステル、ウラシル-5-オキシ酢酸v、5-メチル-2-チオウラシル、3-3-アミノ-3-N-2-カルボキシプロピルウラシル、3-3-アミノ-3-カルボキシプロピルウラシル、および2,6-ジアミノプリンなどが挙げられるがそれらに限定されない。本明細書においてRNA干渉またはRNAiRNAinterferenceとは、交換可能に使用され、二本鎖RNAdoublestrandedRNA:dsRNAによって配列特異的にRNAが分解されることによって、タンパク質への翻訳が阻害され、遺伝子発現が抑制される現象をいう。遺伝子発現抑制手法としての植物におけるRNAiについての総説は、例えば、三木ら、植物におけるRNAiの分子機構とその応用実験医学Vol.22No.42004本明細書中で、参考として援用されるなどが挙げられる。RNAiの利点の一つとして、弱いものから強いものまで様々なレベルの発現抑制が個々の遺伝子によって取得され得ること挙げられる。現在、RNAiは、簡便かつ有効な遺伝子発現抑制法として利用されている。好ましい実施形態において、RNAiは、二本鎖RNAdsRNAともいうのようなRNAiを引き起こす因子を細胞に導入することにより、相同なRNAが特異的に分解され、遺伝子産物の合成が抑制される現象およびそれに用いられる技術をいう。本明細書において用語RNAiはまた、文脈に応じて、RNAiを引き起こす因子と同義に用いられ得る。RNAiが因子を示すときは、例えば、20塩基以上であり、通常25塩基以上であり、好ましくは、30塩基以上でありうる。本明細書においてRNAiを引き起こす因子とは、RNAiを引き起こすことができるような任意の因子をいう。本明細書において遺伝子に対してRNAiを引き起こす因子とは、その遺伝子に関するRNAiを引き起こし、RNAiがもたらす効果例えば、その遺伝子の発現抑制などが達成されることをいう。そのようなRNAiを引き起こす因子としては、例えば、標的遺伝子の核酸配列の一部、あるいは上記の核酸配列と少なくとも90の同一性を有する核酸配列に対して少なくとも約70、少なくとも約80、少なくとも約90、少なくとも約95またはそれ以上の相同性を有する配列またはストリンジェントな条件下でハイブリダイズする配列を含む、少なくとも10ヌクレオチド長の二本鎖部分を含むRNAまたはその改変体が挙げられるがそれに限定されない。ここで、この因子は、好ましくは、3’突出末端を含み、より好ましくは、3’突出末端は、2ヌクレオチド長以上のDNA例えば、2~4ヌクレオチド長のDNAであり得る。本明細書においてトリミング配列とは、センス配列およびアンチセンス配列に相当する配列とそれら二つの配列の間に位置する配列スペーサー、ヘアピン、トリミング等と呼ばれているものをいう。下記のような構造:センス配列-トリミング配列-アンチセンス配列;またはアンチセンス配列-トリミング配列-センス配列を有する核酸分子が導入され得たベクターで細胞が形質転換されると、センス配列とアンチセンス配列とが二本鎖RNAを形成し、それら二つの鎖の間に位置する部分はループまたはヘアピン部分として保持された、その一部にループ又はヘアピン構造の一本鎖部分を含む二本鎖RNAshRNAが形成される。このトリミング配列の長さは、センス配列とアンチセンス配列とが二本鎖RNAを形成するときに、このトリミング配列の構成する一本鎖部分がループまたはヘアピン構造をとる限りにおいてどのような長さのものであってもよい。上記shRNAは、核から細胞質に移動し、その導入された細胞内でDicerによって切断されてsiRNAとなり、RNA干渉を引き起こす。トリミング配列の例としては、例えば、配列番号45に示すものが挙げられる。1つの実施形態では、RNAiを引き起こす因子において使用されるセンス配列またはアンチセンス配列の長さは、その下限において少なくとも約100ヌクレオチド、少なくとも約150ヌクレオチド、少なくとも約200ヌクレオチド、少なくとも約250ヌクレオチド、少なくとも約300ヌクレオチド、少なくとも約350ヌクレオチド、好ましくは、少なくとも約400ヌクレオチド、より好ましくは少なくとも約450ヌクレオチド、最も好ましくは少なくとも約500ヌクレオチドの長さであり得るが、これらの長さに限定されず、約100ヌクレオチド~約500ヌクレオチドの間のいずれの長さであってもよい;上記センス配列またはアンチセンス配列の長さは、その上限においては、たとえば、約1050まで、約1100ヌクレオチドまで、約1200ヌクレオチドまで、約1300ヌクレオチドまで、約1400ヌクレオチドまで、約1500ヌクレオチドまで、約2000ヌクレオチドまで、または約2500ヌクレオチドの長さ、あるいは対象となる核酸の全長であり得るが、これらの長さに限定されず、約500~全長までの間の何れの長さであってもよい。理論に束縛されることを望まないが、標的遺伝子を上記範囲たとえば、500塩基程度に設計することによって、ウイルス系統間で幅広くRNAiを誘起させることができると考えられるからである。本明細書において第1の物質または因子が第2の物質または因子に特異的に相互作用するとは、第1の物質または因子が、第2の物質または因子に対して、第2の物質または因子以外の物質または因子特に、第2の物質または因子を含むサンプル中に存在する他の物質または因子に対するよりも高い親和性で相互作用することをいう。物質または因子について特異的な相互作用としては、例えば、核酸におけるハイブリダイゼーション、タンパク質における抗原抗体反応、リガンド-レセプター反応、酵素-基質反応など、核酸およびタンパク質の両方が関係する場合、転写因子とその転写因子の結合部位との反応など、タンパク質-脂質相互作用、核酸-脂質相互作用などが挙げられるがそれらに限定されない。従って、物質または因子がともに核酸である場合、第1の物質または因子が第2の物質または因子に特異的に相互作用することには、第1の物質または因子が、第2の物質または因子に対して少なくとも一部に相補性を有することが包含される。また例えば、物質または因子がともにタンパク質である場合、第1の物質または因子が第2の物質または因子に特異的に相互作用することとしては、例えば、抗原抗体反応による相互作用、レセプター-リガンド反応による相互作用、酵素-基質相互作用などが挙げられるがそれらに限定されない。2種類の物質または因子がタンパク質および核酸を含む場合、第1の物質または因子が第2の物質または因子に特異的に相互作用することには、転写因子と、その転写因子が対象とする核酸分子の結合領域との間の相互作用が包含される。したがって、本明細書においてポリヌクレオチドまたはポリペプチドなどの生物学的因子に対して特異的に相互作用する因子とは、そのポリヌクレオチドまたはそのポリペプチドなどの生物学的因子に対する親和性が、他の無関連の特に、同一性が30未満のポリヌクレオチドまたはポリペプチドに対する親和性よりも、代表的には同等またはより高いか、好ましくは有意に例えば、統計学的に有意に高いものを包含する。そのような親和性は、例えば、ハイブリダイゼーションアッセイ、結合アッセイなどによって測定することができる。本明細書において発現抑制剤とは、広義には、遺伝子の細胞内における発現、すなわち、ゲノムの複製、転写、翻訳を抑制することができるあらゆる因子をいう。本明細書において因子agentとしては、意図する目的を達成することができる限りどのような物質または他の要素例えば、光、放射能、熱、電気などのエネルギーでもあってもよい。そのような物質としては、例えば、タンパク質、ポリペプチド、オリゴペプチド、ペプチド、ポリヌクレオチド、オリゴヌクレオチド、ヌクレオチド、核酸例えば、cDNA、ゲノムDNAのようなDNA、mRNAあるいはゲノムRNAのようなRNAを含む、ポリサッカリド、オリゴサッカリド、脂質、有機低分子例えば、ホルモン、リガンド、情報伝達物質、有機低分子、コンビナトリアルケミストリで合成された分子、医薬品として利用され得る低分子例えば、低分子リガンドなどなどであって、代表的には分子量約10,000以下のもの例えば、約1,000以下のものを指すがそれらに限定されない、これらの複合分子が挙げられるがそれらに限定されない。ポリヌクレオチドに対して特異的な因子としては、代表的には、そのポリヌクレオチドの配列に対して一定の配列相同性を例えば、70以上の配列同一性もって相補性を有するポリヌクレオチド、プロモーター領域に結合する転写因子のようなポリペプチドなどが挙げられるがそれらに限定されない。ポリペプチドに対して特異的な因子としては、代表的には、そのポリペプチドに対して特異的に指向された抗体またはその誘導体あるいはその類似物例えば、単鎖抗体、そのポリペプチドがレセプターまたはリガンドである場合の特異的なリガンドまたはレセプター、そのポリペプチドが酵素である場合、その基質などが挙げられるがそれらに限定されない。本明細書において複合分子とは、ポリペプチド、ポリヌクレオチド、脂質、糖、低分子などの分子が複数種連結してできた分子をいう。そのような複合分子としては、例えば、RNAとDNAとの複合分子、糖脂質、糖ペプチドなどが挙げられるがそれらに限定されない。本明細書では、配列番号2のアミノ酸を有するポリペプチドまたはその改変体もしくはフラグメントであって、ラブドウイルス科のウイルスの増殖に関与する生物学的な活性を有する限り、それぞれの改変体もしくはフラグメントなどをコードする核酸分子も使用することができる。また、そのような核酸分子を含む複合分子も使用することができる。本明細書において単離された生物学的因子例えば、細胞、核酸またはタンパク質などとは、その生物学的因子が天然に存在する生物体の細胞内の他の生物学的因子例えば、核酸である場合、核酸以外の因子および目的とする核酸以外の核酸配列を含む核酸;タンパク質である場合、タンパク質以外の因子および目的とするタンパク質以外のアミノ酸配列を含むタンパク質などから実質的に分離または精製されたものをいう。単離された核酸およびタンパク質には、標準的な精製方法によって精製された核酸およびタンパク質が含まれる。したがって、単離された核酸およびタンパク質は、化学的に合成した核酸およびタンパク質を包含する。本明細書において精製された生物学的因子例えば、細胞、核酸またはタンパク質などとは、その生物学的因子に天然に随伴する因子の少なくとも一部が除去されたものをいう。したがって、通常、精製された生物学的因子におけるその生物学的因子の純度は、その生物学的因子が通常存在する状態よりも高いすなわち濃縮されている。本明細書中で使用される用語精製されたおよび単離されたは、好ましくは少なくとも75重量、より好ましくは少なくとも85重量、よりさらに好ましくは少なくとも95重量、そして最も好ましくは少なくとも98重量の、同型の生物学的因子が存在することを意味し、その対象物を天然物から区別するために用いられる。本明細書で使用される場合、遺伝子導入とは、生体内またはインビトロにおいて、標的細胞内に、天然、合成または組換えの所望の遺伝子または遺伝子断片を、導入された遺伝子がその機能を維持するように、導入することをいう。本発明において導入される遺伝子または遺伝子断片は、特定の配列を有するDNA、RNAまたはこれらの合成アナログである核酸を包含する。また、本明細書において使用される場合、遺伝子導入、形質転換、トランスフェクション、およびトランスフェクトは、互換可能に使用される。本明細書で使用される場合、遺伝子導入ベクターおよび遺伝子ベクターは互換可能に使用される。遺伝子導入ベクターおよび遺伝子ベクターとは、目的のポリヌクレオチド配列を目的の細胞へと移入させることができるベクターをいう。遺伝子導入ベクターおよび遺伝子ベクターとしては、プラスミドベクターなどが挙げられるが、これらに限定されない。本明細書で使用される場合、遺伝子導入活性とは、ベクターによる遺伝子導入の活性をいい、導入された遺伝子の機能例えば、発現ベクターの場合、コードされるタンパク質の発現および/またはそのタンパク質の活性などを指標として検出され得る。本明細書で使用される場合、外来の核酸分子とは、ある対象核酸分子内に含まれるその対象核酸分子以外の起源の核酸分子などをいう。この外来の核酸分子は、遺伝子導入ベクターによって導入された遺伝子が発現するために適切な調節配列例えば、転写に必要なプロモーター、エンハンサー、ターミネーター、およびポリA付加シグナル、ならびに翻訳に必要なリボゾーム結合部位、開始コドン、終止コドンなどと作動可能に連結される。本発明の別の局面において、外来遺伝子は、この外来遺伝子の発現のための調節配列を含まない。遺伝子導入ベクター内に含まれる外来の核酸分子は、代表的にはDNAまたはRNAの核酸分子であるが、導入される核酸分子は、目的例えば、RNA干渉を果たす核酸アナログ分子を含んでもよい。遺伝子導入ベクター内に含まれる分子種は、単一の遺伝子分子種であっても、複数の異なる遺伝子分子種であってもよい。従って、本明細書において遺伝子、ポリヌクレオチド、ポリペプチドなどの発現の減少または抑制とは、交換可能に使用され、ある因子すなわち、発現抑制剤を作用させたときに、作用させないときよりも、発現の量が有意に減少することをいう。好ましくは、発現の減少は、ポリペプチドの発現量の減少を含む。本明細書において遺伝子、ポリヌクレオチド、ポリペプチドなどの発現の増加とは、本発明の因子を作用させたときに、作用させないときよりも、発現の量が有意に増加することをいう。好ましくは、発現の増加は、ポリペプチドの発現量の増加を含む。本明細書において発現の誘導とは、ある細胞にある因子を作用させてその遺伝子の発現量を増加させることをいう。したがって、発現の誘導は、まったくその遺伝子の発現が見られなかった場合にその遺伝子が発現するようにすること、およびすでにその遺伝子の発現が見られていた場合にその遺伝子の発現が増大することを包含する。本明細書において、遺伝子が特異的に発現するとは、その遺伝子が、植物等の生物の特定の部位または時期において他の部位または時期とは異なる好ましくは高いレベルで発現されることをいう。特異的に発現するとは、ある部位特異的部位にのみ発現してもよく、それ以外の部位においても発現していてもよい。好ましくは特異的に発現するとは、ある部位においてのみ発現することをいう。本明細書中で使用される場合、ジーンサイレンシングとは、遺伝子発現の抑制現象を意味する。ジーンサイレンシングと呼ばれる現象としては、ゲノムインプリンティング、X染色体の不活性化、PEVpositioneffectvariegation、トウモロコシのパラミューテションなどが挙げられる。植物におけるトランスジーン導入遺伝子の不活性化の一つとして、相同性依存型ジーンサイレンシングHomologydependentgenesilencing;HDGSがあり、そのHDGS様の現象は、植物内在性遺伝子、植物以外のトランスジェニックにおいても見られており、生物のなんらかの遺伝子制御機構であると考えられる。本明細書中で使用される場合、相同性依存型ジーンサイレンシングまたはHDGSは、複数の遺伝子が、その塩基配列の相同性またはその配列の類似性に依存して起こる遺伝子発現の抑制現象をいう。特に、特定の導入された遺伝子導入遺伝子を過剰発現させると、その導入遺伝子とともに本来ゲノムに存在していたすなわち、内在的な同一または相同な遺伝子が抑制される現象をいう。HDGSとしては、例えば、PTGSが挙げられる。本明細書中で使用される場合、転写後型ジーンサイレンシングまたはPTGSは、転写後に起こる遺伝子発現の抑制現象をいう。RNAiもPTGSの一種である。本明細書中において使用される場合、コサプレッション、コーサプレッションおよび共抑制は、同意義語として使用され得る。コサプレッションとは、導入遺伝子を含む植物において、その導入遺伝子と相同な配列を有する内在性の遺伝子その植物において、その植物のゲノム上の存在していた、その導入遺伝子と同一であるかまたは相同である遺伝子の両方の発現が抑制される現象をいう。この現象は、ペチュニアの花の色素合成にかかる遺伝子の発現機構を研究している過程に発見されたNapoli,C.,Lemieux,C.Joergensen,R.:PlantCell2,291299;ならびにvanderKrol,Retal:PlantCell2,291299。その後、植物のみでなくアカパンカビ、ショウジョウバエ、線虫、哺乳動物細胞などにおいてもそれらの同様の現象が発見されている。このようなコサプレッションを、育種目的に利用した例は、SCIENCEVol.30929July2005p.741745などに記載されている。理論に束縛されないが、RNAiが働く機構として考えられるものの一つとして、dsRNAのようなRNAiを引き起こす分子が細胞に導入されると、比較的長い例えば、40塩基対以上RNAの場合、ヘリカーゼドメインを持つダイサーDicerと呼ばれるRNaseIII様のヌクレアーゼがATP存在下で、その分子を3’末端から約20塩基対ずつ切り出し、短鎖dsRNAsiRNAとも呼ばれるを生じる。本明細書においてsiRNAとは、shortinterferingRNAの略称であり、人工的に化学合成されるかまたは生化学的に合成されたものか、あるいは生物体内で合成されたものか、あるいは約40塩基以上の二本鎖RNAが体内で分解されてできた10塩基対以上の短鎖二本鎖RNAをいい、通常、5’-リン酸、3’-OHの構造を有しており、3’末端は約2塩基突出している。このsiRNAに特異的なタンパク質が結合して、RISCRNAinducedsilencingcomplexが形成される。この複合体は、siRNAと同じ配列を有するmRNAを認識して結合し、RNaseIII様の酵素活性によってsiRNAの中央部でmRNAを切断する。siRNAの配列と標的として切断するmRNAの配列の関係については、100一致することが好ましい。しかし、siRNAの中央から外れた位置についての塩基の変異については、完全にRNAiによる切断活性がなくなるのではなく、部分的な活性が残存する。他方、siRNAの中央部の塩基の変異は影響が大きく、RNAiによるmRNAの切断活性が極度に低下する。このような性質を利用して、変異をもつmRNAについては、その変異を中央に配したsiRNAを合成し、細胞内に導入することで特異的に変異を含むmRNAだけを分解することができる。従って、本発明では、siRNAそのものをRNAiを引き起こす因子として用いることができるし、siRNAを生成するような因子例えば、代表的に約40塩基以上のdsRNAをそのような因子として用いることができる。また、理論に束縛されることを希望しないが、siRNAは、上記経路とは別に、siRNAのアンチセンス鎖がmRNAに結合してRNA依存性RNAポリメラーゼRdRPのプライマーとして作用し、dsRNAが合成され、このdsRNAが再びダイサーの基質となり、新たなsiRNAを生じて作用を増幅することも企図される。従って、本発明では、siRNA自体およびsiRNAが生じるような因子もまた、有用である。実際に、昆虫などでは、例えば35分子のdsRNA分子が、1,000コピー以上ある細胞内のmRNAをほぼ完全に分解することから、siRNA自体およびsiRNAが生じるような因子が有用であることが理解される。本発明においてsiRNAと呼ばれる、約20塩基前後例えば、代表的には約21~23塩基長またはそれ未満の長さの二本鎖RNAを用いることができる。このようなsiRNAは、細胞に発現させることにより遺伝子発現を抑制し、そのsiRNAの標的となる病原遺伝子の発現を抑えることから、疾患の治療、予防、予後などに使用することができる。本発明において用いられるsiRNAは、RNAiを引き起こすことができる限り、どのような形態をとっていてもよい。別の実施形態において、本発明のRNAiを引き起こす因子は、3’末端に突出部を有する短いヘアピン構造shRNA;shorthairpinRNAであり得る。本明細書においてshRNAとは、一本鎖RNAで部分的に回文状の塩基配列を含むことにより、分子内で二本鎖構造をとり、ヘアピンのような構造となる約20塩基対以上の分子をいう。そのようなshRNAは、人工的に化学合成される。あるいは、そのようなshRNAは、センス鎖およびアンチセンス鎖のDNA配列を逆向きに連結したヘアピン構造のDNAをT7RNAポリメラーゼによりインビトロでRNAを合成することによって生成することができる。理論に束縛されることは希望しないが、そのようなshRNAは、細胞内に導入された後、細胞内で約20塩基代表的には例えば、21塩基、22塩基、23塩基の長さに分解され、siRNAと同様にRNAiを引き起こし、本発明の処置効果があることが理解されるべきである。このような効果は、昆虫、植物、動物哺乳動物を含むなど広汎な生物において発揮されることが理解されるべきである。このように、shRNAは、siRNAと同様にRNAiを引き起こすことから、本発明の有効成分として用いることができる。shRNAはまた、好ましくは、3’突出末端を有し得る。二本鎖部分の長さは特に限定されないが、好ましくは約10ヌクレオチド長以上、より好ましくは約20ヌクレオチド長以上であり得る。ここで、3’突出末端は、好ましくはDNAであり得、より好ましくは少なくとも2ヌクレオチド長以上のDNAであり得、さらに好ましくは2~4ヌクレオチド長のDNAであり得る。本発明において用いられるRNAiを引き起こす因子は、人工的に合成した例えば、化学的または生化学的ものでも、天然に存在するものでも用いることができ、この両者の間で本発明の効果に本質的な違いは生じない。化学的に合成したものでは、液体クロマトグラフィーなどにより精製をすることが好ましい。本発明において用いられるRNAiを引き起こす因子は、インビトロで合成することもできる。この合成系において、T7RNAポリメラーゼおよびT7プロモーターを用いて、鋳型DNAからアンチセンスおよびセンスのRNAを合成する。これらをインビトロでアニーリングした後、細胞に導入すると、上述のような機構を通じてRNAiが引き起こされ、本発明の効果が達成される。ここでは、例えば、リン酸カルシウム法でそのようなRNAを細胞内に導入することができる。本発明のRNAiを引き起こす因子としてはまた、mRNAとハイブリダイズし得る一本鎖、あるいはそれらのすべての類似の核酸アナログのような因子も挙げられる。そのような因子もまた、本発明の方法および組成物において有用である。本明細書において、RTYVについて、配列番号2NP、配列番号4P、配列番号6P3または配列番号12P6等、好ましくは配列番号4P、配列番号6P3または配列番号12P6のアミノ酸配列を有するポリペプチドまたはその改変体もしくはフラグメントなどのタンパク質をコードする天然の核酸は、例えば、配列番号1NPコード領域、配列番号3Pコード領域、配列番号5P3コード領域または配列番号11P6コード領域等、好ましくは、配列番号3Pコード領域、配列番号5P3コード領域または配列番号11P6コード領域に示される核酸配列の一部またはその改変体を含むPCRプライマーおよびハイブリダイゼーションプローブを有するcDNAライブラリーから容易に分離される。本明細書において、ハイブリダイゼーションのためのストリンジェントな条件とは、標的配列に対して類似性または相同性を有するヌクレオチド鎖の相補鎖が標的配列に優先的にハイブリダイズし、そして類似性または相同性を有さないヌクレオチド鎖の相補鎖が実質的にハイブリダイズしない条件を意味する。ある核酸配列の相補鎖とは、核酸の塩基間の水素結合に基づいて対合する核酸配列例えば、Aに対するT、Gに対するCをいう。ストリンジェントな条件は配列依存的であり、そして種々の状況で異なる。より長い配列は、より高い温度で特異的にハイブリダイズする。一般に、ストリンジェントな条件は、規定されたイオン強度およびpHでの特定の配列についての熱融解温度Tmより約5°C低く選択される。Tmは、規定されたイオン強度、pH、および核酸濃度下で、標的配列に相補的なヌクレオチドの50が平衡状態で標的配列にハイブリダイズする温度である。ストリンジェントな条件は配列依存的であり、そして種々の環境パラメーターによって異なる。核酸のハイブリダイゼーションの一般的な指針は、Tijssen、LaboratoryTechniquesInBiochemistryAndMolecularBiologyHybridizationWithNucleicAcidProbesPartI、第2章Overviewofprinciplesofhybridizationandthestrategyofnucleicacidprobeassay、Elsevier,NewYorkに見出される。代表的には、ストリンジェントな条件は、塩濃度が約1.0MNa未満であり、代表的には、pH7.0~8.3で約0.01~1.0MのNa濃度または他の塩であり、そして温度は、短いヌクレオチド例えば、10~50ヌクレオチドについては少なくとも約30°C、そして長いヌクレオチド例えば、50ヌクレオチドより長いについては少なくとも約60°Cである。ストリンジェントな条件はまた、ホルムアミドのような不安定化剤の添加によって達成され得る。本明細書におけるストリンジェントな条件として、50のホルムアミド、1MのNaCl、1のSDS37°Cの緩衝溶液中でのハイブリダイゼーション、および0.1×SSCで60°Cでの洗浄が挙げられる。本明細書において、ストリンジェントな条件でハイブリダイズするポリヌクレオチドとは、当該分野で慣用される周知の条件をいう。本発明のポリヌクレオチド中から選択されたポリヌクレオチドをプローブとして、コロニーハイブリダイゼーション法、プラークハイブリダイゼーション法あるいはサザンブロットハイブリダイゼーション法等を用いることにより、そのようなポリヌクレオチドを得ることができる。具体的には、コロニーあるいはプラーク由来のDNAを固定化したフィルターを用いて、0.7~1.0MのNaCl存在下、65°Cでハイブリダイゼーションを行った後、0.1~2倍濃度のSSCsalinesodiumcitrate溶液1倍濃度のSSC溶液の組成は、150mM塩化ナトリウム、15mMクエン酸ナトリウムであるを用い、65°C条件下でフィルターを洗浄することにより同定できるポリヌクレオチドを意味する。ハイブリダイゼーションは、MolecularCloning2nded.,CurrentProtocolsinMolecularBiology,Supplement1~38、DNACloning1:CoreTechniques,APracticalApproach,SecondEdition,OxfordUniversityPress等の実験書に記載されている方法に準じて行うことができる。ここで、ストリンジェントな条件下でハイブリダイズする配列からは、好ましくは、A配列のみまたはT配列のみを含む配列が除外される。ハイブリダイズ可能なポリヌクレオチドとは、上記ハイブリダイズ条件下で別のポリヌクレオチドにハイブリダイズすることができるポリヌクレオチドをいう。ハイブリダイズ可能なポリヌクレオチドとして具体的には、本発明で具体的に示されるアミノ酸配列を有するポリペプチドをコードするDNAの塩基配列と少なくとも60以上の相同性を有するポリヌクレオチド、好ましくは80以上の相同性を有するポリヌクレオチド、90以上の相同性を有するポリヌクレオチド、さらに好ましくは95以上の相同性を有するポリヌクレオチドを挙げることができる。本明細書において高度にストリンジェントな条件は、核酸配列において高度の相補性を有するDNA鎖のハイブリダイゼーションを可能にし、そしてミスマッチを有意に有するDNAのハイブリダイゼーションを除外するように設計された条件をいう。ハイブリダイゼーションのストリンジェンシーは、主に、温度、イオン強度、およびホルムアミドのような変性剤の条件によって決定される。このようなハイブリダイゼーションおよび洗浄に関する高度にストリンジェントな条件の例は、0.0015M塩化ナトリウム、0.0015Mクエン酸ナトリウム、65~68°C、または0.015M塩化ナトリウム、0.0015Mクエン酸ナトリウム、および50ホルムアミド、42°Cである。このような高度にストリンジェントな条件については、Sambrooketal.,MolecularCloning:ALaboratoryManual、第2版、ColdSpringHarborLaboratory;およびAndersonetal.、NucleicAcidHybridization:aPracticalapproach、IV、IRLPressLimited.Limited,Oxford,Englandを参照のこと。必要により、よりストリンジェントな条件例えば、より高い温度、より低いイオン強度、より高いホルムアミド、または他の変性剤を、使用してもよい。他の薬剤が、非特異的なハイブリダイゼーションおよび/またはバックグラウンドのハイブリダイゼーションを減少する目的で、ハイブリダイゼーション緩衝液および洗浄緩衝液に含まれ得る。そのような他の薬剤の例としては、0.1ウシ血清アルブミン、0.1ポリビニルピロリドン、0.1ピロリン酸ナトリウム、0.1ドデシル硫酸ナトリウムNaDodSO4またはSDS、Ficoll、Denhardt溶液、超音波処理されたサケ精子DNAまたは別の非相補的DNAおよび硫酸デキストランであるが、他の適切な薬剤もまた、使用され得る。これらの添加物の濃度および型は、ハイブリダイゼーション条件のストリンジェンシーに実質的に影響を与えることなく変更され得る。ハイブリダイゼーション実験は、通常、pH6.8~7.4で実施されるが;代表的なイオン強度条件において、ハイブリダイゼーションの速度は、ほとんどpH独立である。Andersonetal.,NucleicAcidHybridization:aPracticalApproach、第4章、IRLPressLimitedOxford,Englandを参照のこと。DNA二重鎖の安定性に影響を与える因子としては、塩基の組成、長さおよび塩基対不一致の程度が挙げられる。ハイブリダイゼーション条件は、当業者によって調整され得、これらの変数を適用させ、そして異なる配列関連性のDNAがハイブリッドを形成するのを可能にする。完全に一致したDNA二重鎖の融解温度は、以下の式によって概算され得る。Tm°C=815166logNa041GC-600N072ホルムアミドここで、Nは、形成される二重鎖の長さであり、[Na]は、ハイブリダイゼーション溶液または洗浄溶液中のナトリウムイオンのモル濃度であり、GCは、ハイブリッド中のグアニンシトシン塩基のパーセンテージである。不完全に一致したハイブリッドに関して、融解温度は、各1不一致ミスマッチに対して約1°Cずつ減少する。本明細書において中程度にストリンジェントな条件とは、高度にストリンジェントな条件下で生じ得るよりも高い程度の塩基対不一致を有するDNA二重鎖が、形成し得る条件をいう。代表的な中程度にストリンジェントな条件の例は、0.015M塩化ナトリウム、0.0015Mクエン酸ナトリウム、50~65°C、または0.015M塩化ナトリウム、0.0015Mクエン酸ナトリウム、および20ホルムアミド、37~50°Cである。例として、0.015Mナトリウムイオン中、50°Cの中程度にストリンジェントな条件は、約21の不一致を許容する。本明細書において高度にストリンジェントな条件と中程度にストリンジェントな条件との間に完全な区別は存在しないことがあり得ることが、当業者によって理解される。例えば、0.015Mナトリウムイオンホルムアミドなしにおいて、完全に一致した長いDNAの融解温度は、約71°Cである。65°C同じイオン強度での洗浄において、これは、約6不一致を許容にする。より離れた関連する配列を捕獲するために、当業者は、単に温度を低下させ得るか、またはイオン強度を上昇し得る。約20ヌクレオチドまでのオリゴヌクレオチドプローブについて、1MNaClにおける融解温度の適切な概算は、Tm=1つのA-T塩基につき2°C1つのG-C塩基対につき4°Cによって提供される。なお、6×クエン酸ナトリウム塩SSCにおけるナトリウムイオン濃度は、1MであるSuggsら、DevelopmentalBiologyUsingPurifiedGenes、683頁、BrownおよびFoxを参照のこと。配列番号2NP、配列番号4P、配列番号6P3または配列番号12P6等、好ましくは、配列番号4P、配列番号6P3または配列番号12P6のアミノ酸配列を有するポリペプチドまたはその改変体もしくはフラグメントなどをコードする核酸は、本質的に1ウシ血清アルブミンBSA;500mMリン酸ナトリウムNaPO4;1mMEDTA;42°Cの温度で7SDSを含むハイブリダイゼーション緩衝液、および本質的に2×SSC600mMNaCl;60mMクエン酸ナトリウム;50°Cの0.1SDSを含む洗浄緩衝液によって定義される低ストリンジェント条件下、さらに好ましくは本質的に50°Cの温度での1ウシ血清アルブミンBSA;500mMリン酸ナトリウムNaPO4;15ホルムアミド;1mMEDTA;7SDSを含むハイブリダイゼーション緩衝液、および本質的に50°Cの1×SSC300mMNaCl;30mMクエン酸ナトリウム;1SDSを含む洗浄緩衝液によって定義される低ストリンジェント条件下、最も好ましくは本質的に50°Cの温度での1ウシ血清アルブミンBSA;200mMリン酸ナトリウムNaPO4;15ホルムアミド;1mMEDTA;7SDSを含むハイブリダイゼーション緩衝液、および本質的に65°Cの0.5×SSC150mMNaCl;15mMクエン酸ナトリウム;0.1SDSを含む洗浄緩衝液によって定義される低ストリンジェント条件下で、配列番号1NP、配列番号3P、配列番号5P3または配列番号11P6等、好ましくは、配列番号3P、配列番号5P3または配列番号11P6に示す核酸配列の1つまたはその一部とハイブリダイズし得る。本明細書において相同性は、2以上の配列の比較において、それらの配列が進化的に祖先を共有することを示す。2種類の遺伝子が相同性を有するか否かは、配列の直接の比較により類似性に基づいた判定をおこなうか、またはストリンジェントな条件下でのハイブリダイゼーション法によって調べられ得る。配列の直接の比較により類似性に基づいた判定をおこなう場合、その類似性測定過程のアライメントにおける最も単純な解釈として、同一なもしくは等価である文字列塩基、アミノ酸残基などで並置されている文字列が、これらの領域が祖先配列のまま変化しなかったものであることを示し、同一でないもしくは、等価でない文字列が、突然変異が一方の配列で起こったものであるとの考察が可能である。アライメントにおけるギャップインデルは、配列の一方で、挿入または欠失が起こったものであると考えられる。つまり、それらの配列の同一性または類似性は高いことは、それらの配列における相同性を強く示唆することが理解される。相同性は、発現抑制剤の設計において参照される。本明細書におけるプライマーとは、高分子合成酵素反応において、合成される高分子化合物の反応の開始に必要な物質をいう。核酸分子の合成反応では、合成されるべき高分子化合物の一部の配列に相補的な核酸分子例えば、DNAまたはRNAなどが用いられ得る。通常プライマーとして用いられる核酸分子としては、目的とする遺伝子の核酸配列と相補的な、少なくとも8の連続するヌクレオチド長の核酸配列を有するものが挙げられる。そのような核酸配列は、好ましくは、少なくとも9の連続するヌクレオチド長の、より好ましくは少なくとも10の連続するヌクレオチド長の、さらに好ましくは少なくとも11の連続するヌクレオチド長の、少なくとも12の連続するヌクレオチド長の、少なくとも13の連続するヌクレオチド長の、少なくとも14の連続するヌクレオチド長の、少なくとも15の連続するヌクレオチド長の、少なくとも16の連続するヌクレオチド長の、少なくとも17の連続するヌクレオチド長の、少なくとも18の連続するヌクレオチド長の、少なくとも19の連続するヌクレオチド長の、少なくとも20の連続するヌクレオチド長の、少なくとも25の連続するヌクレオチド長の、少なくとも30の連続するヌクレオチド長の、少なくとも40の連続するヌクレオチド長の、少なくとも50の連続するヌクレオチド長の、核酸配列であり得る。プローブとして使用される核酸配列には、上述の配列に対して、少なくとも70相同な、より好ましくは、少なくとも80相同な、さらに好ましくは、少なくとも90相同な、少なくとも95相同な核酸配列が含まれる。プライマーとして適切な配列は、合成増幅が意図される配列の性質によって変動し得るが、当業者は、意図される配列に応じて適宜プライマーを設計することができる。そのようなプライマーの設計は当該分野において周知であり、手動でおこなってもよくコンピュータプログラム例えば、LASERGENE,PrimerSelect,DNAStarを用いて行ってもよい。本明細書において、改変体とは、もとのポリペプチドまたはポリヌクレオチドなどの物質に対して、一部が変更されているものをいう。そのような改変体としては、置換改変体、付加改変体、挿入改変体、欠失改変体、短縮truncated改変体、対立遺伝子変異体などが挙げられる。そのような改変体としては、基準となる核酸分子またはポリペプチドに対して、1または数個の置換、付加、挿入および/または欠失、あるいは1つ以上の置換、付加、挿入および/または欠失を含むものが挙げられるがそれらに限定されない。オルソログorthologとは、オルソロガス遺伝子orthologousgeneともいい、二つの遺伝子がある共通祖先からの種分化に由来する遺伝子をいう。オルソログは、通常別のウイルス株において、もとのウイルス株と同様の機能を果たしていることがあり得ることから、本発明のオルソログもまた、本発明において有用であり得る。本明細書において保存的に改変された改変体は、アミノ酸配列および核酸配列の両方に適用される。特定の核酸配列に関して、保存的に改変された改変体とは、同一のまたは本質的に同一のアミノ酸配列をコードする核酸をいい、核酸がアミノ酸配列をコードしない場合には、本質的に同一な配列をいう。このような塩基配列の改変法としては、制限酵素などによる切断、DNAポリメラーゼ、Klenowフラグメント、DNAリガーゼなどによる処理等による連結等の処理、合成オリゴヌクレオチドなどを用いた部位特異的塩基置換法特定部位指向突然変異法;MarkZollerandMichaelSmith,MethodsinEnzymology,100,468500が挙げられるが、この他にも通常分子生物学の分野で用いられる方法によって改変を行うこともできる。本明細書において使用される核酸分子は、目的とする遺伝子の発現を抑制する限り、上述のようにその核酸の配列の一部が欠失または他の塩基により置換されていてもよく、あるいは他の核酸配列が一部挿入されていてもよい。あるいは、5’末端および/または3’末端に他の核酸が結合していてもよい。また、ポリペプチドをコードする遺伝子をストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、そのポリペプチドと実質的に同一の機能を有するポリペプチドをコードする核酸分子でもよい。このような遺伝子は、当該分野において公知であり、本発明において利用することができる。このような核酸は、周知のPCR法により得ることができ、化学的に合成することもできる。これらの方法に、例えば、部位特異的変位誘発法、ハイブリダイゼーション法などを組み合わせてもよい。本明細書において、ポリペプチドまたはポリヌクレオチドの置換、付加、挿入および/または欠失とは、もとのポリペプチドまたはポリヌクレオチドに対して、それぞれアミノ酸もしくはその代替物、またはヌクレオチドもしくはその代替物が、置き換わること、付け加わること、挿入されること、または取り除かれることをいう。このような置換、付加、挿入および/または欠失の技術は、当該分野において周知であり、そのような技術の例としては、部位特異的変異誘発技術などが挙げられる。基準となる核酸分子またはポリペプチドにおけるこれらの変化は、この核酸分子の5’末端もしくは3’末端で生じ得るか、またはこのポリペプチドを示すアミノ酸配列のアミノ末端部位もしくはカルボキシ末端部位で生じ得るか、またはそれらの末端部位の間のどこにでも生じ得、基準配列中の残基間で個々に散在する。置換、付加または欠失は、1つ以上であれば任意の数でよく、そのような数は、その置換、付加または欠失を有する改変体において目的とする機能例えば、ホルモン、サイトカインの情報伝達機能などが保持される限り、多くすることができる。例えば、そのような数は、1または数個であり得、そして好ましくは、全体の長さの20以内、15以内、10以内、5以内、または150個以下、100個以下、50個以下、25個以下などであり得る。一般技術本明細書において用いられる分子生物学的手法、生化学的手法、微生物学的手法は、当該分野において周知であり慣用されるものであり、例えば、SambrookJ.etal..MolecularCloning:ALaboratoryManual,ColdSpringHarborおよびその3rdEd.;Ausubel,F.M..CurrentProtocolsinMolecularBiology,GreenePub.AssociatesandWileyInterscience;Ausubel,F.M..ShortProtocolsinMolecularBiology:ACompendiumofMethodsfromCurrentProtocolsinMolecularBiology,GreenePub.AssociatesandWileyInterscienceInnis,M.A..PCRProtocols:AGuidetoMethodsandApplications,AcademicPress;Ausubel,F.M..ShortProtocolsinMolecularBiology:ACompendiumofMethodsfromCurrentProtocolsinMolecularBiology,GreenePub.AssociatesAusubel,F.M..ShortProtocolsinMolecularBiology:ACompendiumofMethodsfromCurrentProtocolsinMolecularBiology,GreenePub.AssociatesInnis,M.A.etal..PCRStrategies,AcademicPressAusubel,F.M..ShortProtocolsinMolecularBiology:ACompendiumofMethodsfromCurrentProtocolsinMolecularBiology,Wiley,andannualupdatesSninsky,J.J.etal..PCRApplications:ProtocolsforFunctionalGenomics,AcademicPress、別冊実験医学遺伝子導入発現解析実験法羊土社、1997などに記載されており、これらは本明細書において関連する部分全部であり得るが参考として援用される。人工的に合成した遺伝子を作製するためのDNA合成技術および核酸化学については、例えば、Gait,M.J..OligonucleotideSynthesis:APracticalApproach,IRLPress;Gait,M.J..OligonucleotideSynthesis:APracticalApproach,IRLPress;Eckstein,F..OligonucleotidesandAnalogues:APracticalApproac,IRLPressAdams,R.L.etal..TheBiochemistryoftheNucleicAcids,ChapmanHallShabarova,Z.etal..AdvancedOrganicChemistryofNucleicAcids,WeinheimBlackburn,G.M.etal..NucleicAcidsinChemistryandBiology,OxfordUniversityPressHermanson,G.T..BioconjugateTechniques,AcademicPressなどに記載されており、これらは本明細書において関連する部分が参考として援用される。遺伝子工学本発明において用いられる配列番号2NP、配列番号4P、配列番号6P3または配列番号12P6等、好ましくは、配列番号4P、配列番号6P3または配列番号12P6のアミノ酸配列を有するポリペプチドならびにそのフラグメントおよび改変体は、遺伝子工学技術を用いて生産することができる。本明細書において遺伝子について言及する場合、ベクターまたは組み換えベクターとは、目的のポリヌクレオチド配列を目的の細胞へと移入させることができるベクターをいう。そのようなベクターとしては、原核細胞、酵母、動物細胞、植物細胞、昆虫細胞、動物個体および植物個体などの宿主細胞において自立複製が可能、または染色体中への組込みが可能で、本発明のポリヌクレオチドの転写に適した位置にプロモーターを含有しているものが例示される。ベクターのうち、クローニングに適したベクターをクローニングベクターという。そのようなクローニングベクターは通常、制限酵素部位を複数含むマルチプルクローニング部位を含む。そのような制限酵素部位およびマルチプルクローニング部位は、当該分野において周知であり、当業者は、目的に合わせて適宜選択して使用することができる。そのような技術は、本明細書に記載される文献例えば、Sambrookら、前出に記載されている。好ましいベクターとしては、プラスミド、ファージ、コスミド、エピソーム、ウイルス粒子またはウイルスおよび組み込み可能なDNAフラグメントすなわち、相同組換えによって宿主ゲノム中に組み込み可能なフラグメントが挙げられるが、これらに限定されない。ベクターの1つの型は、プラスミドであり、これは、さらなるDNAセグメントが連結され得る環状二重鎖DNAループをいう。別の型のベクターは、ウイルスベクターであり、ここで、さらなるDNAセグメントは、ウイルスゲノム中に連結され得る。特定のベクター例えば、細菌の複製起点を有する細菌ベクターおよびエピソーム哺乳動物ベクターは、これらが導入される宿主細胞中で自律的に複製し得る。他のベクター例えば、非エピソーム哺乳動物ベクターは、宿主細胞中への導入の際に宿主細胞のゲノム中に組み込まれ、それにより、宿主ゲノムと共に複製される。さらに、特定のベクターは、これらが作動可能に連結される遺伝子の発現を指向し得る。このようなベクターは、本明細書中で、発現ベクターといわれる。従って、本明細書において発現ベクターまたは発現プラスミドとは、構造遺伝子およびその発現を調節するプロモーターに加えて種々の調節エレメントが宿主の細胞中で作動し得る状態で連結されている核酸配列をいう。調節エレメントは、好ましくは、ターミネーター、薬剤耐性遺伝子のような選択マーカーおよび、エンハンサーを含み得る。生物例えば、植物の発現ベクターのタイプおよび使用される調節エレメントの種類が、宿主細胞に応じて変わり得ることは、当業者に周知の事項である。本発明において用いられ得る原核生物細胞に対する組み換えベクターとしては、pcDNA3、pBluescriptSK、pGEMT、pEFBOS、pEGFP、pHAT、pUC18、pFTDESTTM42GATEWAY、pENTRTMDTOPOInvitrogenなどが例示される。原核生物細胞は、遺伝子の増幅、改変などに用いることができる。本明細書において用いられ得る植物細胞に対する組み換えベクターとしては、pANDA奈良先端大学院大学島本教授より分譲、MikiDItohRandShimamotoKRNASilencingofSingleandMultipleMembersinaGeneFamilyofRicePlantPhysiol13819031913、pBE7133GUSHygropE7ΩIGUSHygro、pPZP2Hlacを挙げることができるがそれらに限定されない。本明細書においてターミネーターは、遺伝子のタンパク質をコードする領域の下流に位置し、DNAがmRNAに転写される際の転写の終結、およびポリA配列の付加に関与する配列である。ターミネーターは、mRNAの安定性に寄与し、そして遺伝子の発現量に影響を及ぼすことが知られている。ターミネーターの例としては、CaMV35Sターミネーター、およびノパリン合成酵素遺伝子のターミネーターTnosが挙げられるが、これらに限定されない。本明細書においてプロモーターとは、遺伝子の転写の開始部位を決定し、またその頻度を直接的に調節するDNA上の領域をいい、RNAポリメラーゼが結合して転写を始める塩基配列である。推定プロモーター領域は、構造遺伝子ごとに変動するが、通常構造遺伝子の上流にあるが、これらに限定されず、構造遺伝子の下流にもあり得る。プロモーターは、誘導性であっても、構成的であっても、部位特異的であっても、時期特異的であってもよいが、構成的プロモーターまたは誘導性プロモーターが好ましい。プロモーターとしては、例えば、哺乳動物細胞、大腸菌、酵母などの宿主細胞中で発現できるものであればいかなるものでもよい。本明細書において、遺伝子の発現について用いられる場合、一般に、部位特異性とは、植物の部位におけるその遺伝子の発現の特異性をいう。時期特異性とは、植物の発達段階に応じたその遺伝子の発現の特異性をいう。そのような特異性は、適切なプロモーターを選択することによって、所望の生物に導入することができる。部位特異的調節エレメントを使用して核酸を発現することによって、組換え植物発現ベクターでは、特定の細胞型において核酸の発現を優先的に指向し得る。部位特異的調節エレメントは、当該分野で公知である。本明細書において、部位特異的発現プロモーターとは、器官例えば、根、茎、葉、果実、種子ならびにそれらの組合せなど、組織例えば、表皮、篩部、柔組織、木部、維管束、ならびにそれらの組合せなど、発達段階例えば、発芽期、生長期、開花期、登期ならびにそれらの組み合わせなどなどにおいて、特異的なプロモーターである。原理的には、個体において特異的に発現している遺伝子を単離し、そのプロモーター、発現制御シス領域を単離することによって得られる。本明細書において、プロモーターの発現が構成的であるとは、生物のすべての組織において、その生物の成長/増殖のいずれにあってもほぼ一定の量で発現される性質をいう。具体的には、ノーザンブロット分析したとき、例えば、任意の時点で例えば、2点以上例えば、5日目および15日目の同一または対応する部位のいずれにおいても、ほぼ同程度の発現量がみられるとき、本発明の定義上、発現が構成的であるという。構成的プロモーターは、通常の生育環境にある生物の恒常性維持に役割を果たしていると考えられる。本発明のプロモーターの発現が応答性であるとは、少なくとも1つの因子が生物体に与えられたとき、その発現量が変化する性質をいう。特に、発現量が増加する性質を因子に対して誘導性といい、発現量が減少する性質を因子に対して減少性という。減少性の発現は、正常時において、発現が見られることを前提としているので、構成的な発現と重複する概念である。これらの性質は、生物の任意の部分からRNAを抽出してノーザンブロット分析で発現量を分析することまたは発現されたタンパク質をウェスタンブロットにより定量することにより決定することができる。因子に対して誘導性のプロモーターを本発明の部位特異的組換え誘導因子をコードする核酸とともに組み込んだベクターで形質転換された哺乳動物細胞または哺乳動物特定の組織などを含むは、そのプロモーターの誘導活性をもつ刺激因子を用いることにより、ある条件下での部位特異的組換え配列の部位特異的組換えを行うことができる。本発明のポリヌクレオチドは、そのままでまたは改変されて、当業者に周知の方法を用いて、適切な植物発現ベクターに連結され、公知の遺伝子組換え技術により、植物細胞に導入され得る。導入された遺伝子は、植物細胞中のDNAに組み込まれて存在する。なお、植物細胞中のDNAとは、染色体のみならず、植物細胞中に含まれる各種オルガネラ例えば、ミトコンドリア、葉緑体などに含まれるDNAを含む。本明細書において植物発現ベクターは、本発明の遺伝子の発現を調節するプロモーターなどの種々の調節エレメントが宿主植物の細胞中で作動可能に連結されている核酸配列をいう。本願明細書で用いる用語制御配列は、機能的プロモーターおよび、任意の関連する転写要素例えば、エンハンサー、CCAATボックス、TATAボックス、SPI部位などを有するDNA配列をいう。本願明細書で用いる用語作動可能に連結は、遺伝子が発現し得るように、それに関するポリヌクレオチドと、その発現を調節するプロモーター、エンハンサー等の種々の調節エレメントとが宿主細胞中で作動し得る状態で連結されることをいう。植物発現ベクターは、好適には、植物遺伝子、プロモーター、ターミネーター、薬剤耐性遺伝子およびエンハンサーを含み得る。発現ベクターのタイプおよび使用される調節エレメントの種類が、宿主細胞に応じて変わり得ることは、当業者に周知の事項である。本発明に用いる植物発現ベクターは、さらにT-DNA領域を有し得る。T-DNA領域は、特にアグロバクテリウムを用いて植物を形質転換する場合に遺伝子の導入の効率を高める。本明細書において植物遺伝子プロモーターは、植物で発現するプロモーターを意味する。再生植物のすべての組織において、本発明のポリヌクレオチドの発現を指向させる植物プロモーターフラグメントを採用し得る。構成的に発現させるためのプロモーターとしては、例えば、ノパリン合成酵素遺伝子のプロモーターLangridge,1985,PlantCellRep.4,355、カリフラワーモザイクウイルス19S-RNAを生じるプロモーターGuilley,1982,Cell30,763、カリフラワーモザイクウイルス35S-RNAを生じるプロモーターOdell,1985,Nature313,810、イネのアクチンプロモーターZhang,1991,PlantCell3,1155、トウモロコシユビキチンプロモーターCornejo1993,PlantMol.Biol.23,567、REXφプロモ-タ-Mitsuhara,1996,PlantCellPhysiol.37,49などを用いることができる。あるいは、植物プロモーターは、特定組織において本発明のポリヌクレオチドの発現を指向させ得るか、またはそうでなければ、より特異的な環境または発達の制御下にあり得る。このようなプロモーターは、本明細書では、誘導可能なプロモーターと称する。誘導可能なプロモーターとしては、例えば、光、低温、高温、乾燥、紫外線の照射、特定の化合物の散布などの外因によって発現することが知られているプロモーターなどが挙げられる。この様なプロモーターとしては、例えば、光照射によって発現するリブロース-1,5-2リン酸カルボキシラーゼ小サブユニットをコードする遺伝子のプロモーターFluhr,1986,Pro.Natl.Acad.Sci.USA83,2358、低温によって誘導されるイネのlip19遺伝子のプロモーターAguan,1993,Mol.Gen.Genet.240,1、高温によって誘導されるイネのhsp72、hsp80遺伝子のプロモーターVanBreusegem,1994,Planta193,57、乾燥によって誘導されるシロイヌナズナのrab16遺伝子のプロモーターNundy,1990,Proc.Natl.Acad.Sci.USA87,1406、紫外線の照射によって誘導されるトウモロコシのアルコールデヒドロゲナーゼ遺伝子のプロモーターSchulzeLefert,1989,EMBOJ.8,651などが挙げられる。また、rab16遺伝子のプロモーターは植物ホルモンのアブシジン酸の散布によっても誘導される。本明細書において薬剤耐性遺伝子は、形質転換植物の選抜を容易にするものであることが望ましい。カナマイシン耐性を付与するためのネオマイシンフォスフォトランスフェラーゼIINPTII遺伝子、およびハイグロマイシン耐性を付与するためのハイグロマイシンフォスフォトランスフェラーゼ遺伝子などが好適に用いられ得るが、これらに限定されない。これらの薬剤耐性遺伝子は、本発明においてスクリーニング技術などにおいて用いられる。上記のような植物発現ベクターは、当業者に周知の遺伝子組換え技術を用いて作製され得る。植物発現ベクターの構築には、例えば、pBI系のベクターまたはpUC系のベクターが好適に用いられるが、これらに限定されない。DNA導入のための植物材料としては、導入法などに応じて、葉、茎、根、塊茎、プロトプラスト、カルス、花粉、種子胚、苗条原基などから適当なものを選択することができる。植物細胞とは、任意の植物細胞であり得る。植物細胞の例としては、葉および根などの植物器官の細胞、カルスならびに懸濁培養細胞が挙げられる。植物細胞は、培養細胞、培養組織、培養器官、または植物体のいずれの形態であってもよい。好ましくは、培養細胞、培養組織、または培養器官であり、より好ましくは培養細胞である。また一般に、植物培養細胞へDNAを導入する場合、材料としてプロトプラストが用いられ、エレクトロポーレーション法、ポリエチレングリコール法などの物理化学的方法によってDNAの導入が行われるのに対して、植物組織へDNAを導入する場合、材料としては葉、茎、根、塊茎、カルス、花粉、種子胚、苗条原基など、好ましくは葉、茎、カルスが用いられ、ウイルスもしくはアグロバクテリウムを用いた生物学的方法、またはパーティクルガン法などの物理化学的方法によってDNAの導入が行われる。アグロバクテリウムを介する方法としては、例えば、Nagelらの方法Microbiol.Lett.,67,325が用いられ得る。この方法は、まず、植物発現ベクターで例えば、エレクトロポレーションによってアグロバクテリウムを形質転換し、次いで、形質転換されたアグロバクテリウムをリーフディスク法などの周知の方法により植物組織に導入する方法である。これらの方法は、当該分野において周知であり、形質転換する植物に適した方法が、当業者により適宜選択され得る。植物発現ベクターを導入された細胞は、例えば、カナマイシン耐性などの薬剤耐性を基準として選択される。選択された細胞は、常法により植物体に再生され得る。本発明のポリヌクレオチドが導入された植物細胞から植物を再生させるには、このような植物細胞を、再分化培地、ホルモンフリーのMS培地などに培養すればよい。発根した幼植物体は、土壌に移植して栽培することにより植物体とすることができる。再生再分化の方法は植物細胞の種類により異なる。様々な文献にイネFujimura,1995,PlantTissueCultureLett.2,74、トウモロコシShillito,1989,BioTechnol.7,581、GordenKamm,1990,PlantCell2,603、ジャガイモVisser,1989,Theor.Appl.Genet.78,594、タバコNagata,1971,Planta99,12など各種の植物に対しての再分化の方法が記載されている。再生した植物体においては、当業者に周知の手法を用いて、導入された本発明の遺伝子の発現を確認し得る。この確認は、例えば、ノーザンブロット解析を用いて行い得る。具体的には、植物の葉から全RNAを抽出し、変性アガロースでの電気泳動の後、適切なメンブランにブロットする。このブロットに、導入遺伝子の一部分と相補的な標識したRNAプローブをハイブリダイズさせることにより、本発明の遺伝子のmRNAを検出し得る。本発明のポリヌクレオチドを用いて形質転換され得る植物は、遺伝子導入の可能ないずれの植物をも包含する。大腸菌を宿主細胞として使用する場合、trpプロモーターPtrp、lacプロモーターPlac、PLプロモーター、PRプロモーター、PSEプロモーター等の、大腸菌およびファージ等に由来するプロモーター、SPO1プロモーター、SPO2プロモーター、penPプロモーター等を挙げることができる。またPtrpを2つ直列させたプロモーターPtrpx2、tacプロモーター、lacT7プロモーター、letIプロモーターのように人為的に設計改変されたプロモーター等も用いることができる。本明細書において複製起点とは、DNA複製が開始する染色体上の特定領域をいう。複製起点は、内因性起点を含むようにそのベクターを構築することによって提供され得るか、または宿主細胞の染色体複製機構により提供され得るかのいずれかであり得る。そのベクターが、宿主細胞染色体中に組み込まれる場合、後者が十分であり得る。あるいは、ウイルス複製起点を含むベクターを使用するよりも、当業者は、選択マーカーと本発明のDNAとを同時形質転換する方法によって、哺乳動物細胞を形質転換し得る。適切な選択マーカーの例は、ジヒドロ葉酸還元酵素DHFRまたはチミジンキナーゼである米国特許第4,399,216号を参照。本明細書においてエンハンサーとは、目的遺伝子の発現効率を高めるために用いられる配列をいう。そのようなエンハンサーは当該分野において周知である。例えば、エンハンサーとして、CaMV35Sプロモーター内の上流側の配列を含むエンハンサー領域が用いられるが、これらに限定されない。エンハンサーは複数個用いられ得るが1個用いられてもよいし、用いなくともよい。本発明においてエンハンサーは、目的遺伝子の発現効率を高めるために用いられ得る。エンハンサーとしては、CaMV35Sプロモーター内の上流側の配列を含むエンハンサー領域が好適である。エンハンサーは、1つの植物発現ベクターあたり複数個用いられ得る。本明細書において作動可能に連結されたるとは、所望の配列の発現作動がある転写翻訳調節配列例えば、プロモーター、エンハンサーなどまたは翻訳調節配列の制御下に配置されることをいう。プロモーターが遺伝子に作動可能に連結されるためには、通常、その遺伝子のすぐ上流にプロモーターが配置されるが、必ずしも隣接して配置される必要はない。本明細書において、核酸分子を細胞に導入する技術は、どのような技術でもよく、例えば、形質転換、形質導入、トランスフェクションなどが挙げられる。そのような核酸分子の導入技術は、当該分野において周知であり、かつ、慣用されるものであり、例えば、AusubelF.A.ら編、CurrentProtocolsinMolecularBiology、Wiley、NewYork、NY;SambrookJらMolecularCloning:ALaboratoryManual,2ndEd.およびその第三版,ColdSpringHarborLaboratoryPress,ColdSpringHarbor,NY、別冊実験医学遺伝子導入発現解析実験法羊土社、1997などに記載される。遺伝子の導入は、ノーザンブロット、ウェスタンブロット分析のような本明細書に記載される方法または他の周知慣用技術を用いて確認することができる。また、ベクターの導入方法としては、細胞にDNAを導入する上述のような方法であればいずれも用いることができ、例えば、トランスフェクション、形質導入、形質転換など例えば、リン酸カルシウム法、リポソーム法、DEAEデキストラン法、エレクトロポレーション法、パーティクルガン遺伝子銃を用いる方法などが挙げられる。本明細書において形質転換体とは、形質転換によって作製された細胞などの生命体の全部または一部をいう。形質転換体としては、原核細胞、酵母、動物細胞、植物細胞、昆虫細胞などが例示される。形質転換体は、その対象に依存して、形質転換細胞、形質転換組織、形質転換宿主などともいわれる。本発明において用いられる細胞は、形質転換体であってもよい。本発明において遺伝子操作などにおいて原核生物細胞が使用される場合、原核生物細胞としては、Escherichia属、Serratia属、Bacillus属、Brevibacterium属、Corynebacterium属、Microbacterium属、Pseudomonas属などに属する原核生物細胞、例えば、EscherichiacoliXL1Blue、EscherichiacoliXL2Blue、EscherichiacoliDH1が例示される。本明細書において使用される場合、組換えベクターの導入方法としては、DNAを導入する方法であればいずれも用いることができ、例えば、塩化カルシウム法、エレクトロポレーション法[Methods.Enzymol.,194,182]、リポフェクション法、スフェロプラスト法[Proc.Natl.Acad.Sci.USA,84,1929]、酢酸リチウム法などが挙げられる。本明細書において遺伝子発現たとえば、mRNA発現、ポリペプチド発現の検出または定量は、例えば、mRNAの測定および免疫学的測定方法を含む適切な方法を用いて達成され得る。分子生物学的測定方法としては、例えば、ノーザンブロット法、ドットブロット法またはPCR法などが例示される。免疫学的測定方法としては、例えば、方法としては、マイクロタイタープレートを用いるELISA法、RIA法、蛍光抗体法、ウェスタンブロット法、免疫組織染色法などが例示される。また、定量方法としては、ELISA法またはRIA法などが例示される。アレイ例えば、DNAアレイ、プロテインアレイを用いた遺伝子解析方法によっても行われ得る。DNAアレイについては、秀潤社編、細胞工学別冊DNAマイクロアレイと最新PCR法に広く概説されている。プロテインアレイについては、NatGenet.2002Dec32Suppl:52632に詳述されている。遺伝子発現の分析法としては、上述に加えて、RT-PCR、RACE法、SSCP法、免疫沈降法、two-hybridシステム、インビトロ翻訳などが挙げられるがそれらに限定されない。そのようなさらなる分析方法は、例えば、ゲノム解析実験法中村祐輔ラボマニュアル、編集中村祐輔羊土社2002などに記載されており、本明細書においてそれらの記載はすべて参考として援用される。抵抗性の評価本発明の方法によって作出された遺伝子組換え植物が、病原体に対する抵抗性を有しているか否かは、病徴の観察および病原体感染の可否の検定で確認し得る。例えば、ラブドウイルス科のウイルス病の場合は、特定のイネ品種にツマグロヨコバイなどのRTYVを媒介する昆虫を温室中で放飼してウイルス感染させた場合、病斑形成やイネの背丈などを、原品種または野生型と組換え体とを比較すること、およびELISA法によりウイルス感染の可否を検定することが可能であるが、これに限定されることはない。本明細書において発現量とは、対象となる細胞などにおいて、ポリペプチドまたはmRNAが発現される量をいう。そのような発現量としては、本発明の抗体を用いてELISA法、RIA法、蛍光抗体法、ウェスタンブロット法、免疫組織染色法などの免疫学的測定方法を含む任意の適切な方法により評価される本発明ポリペプチドのタンパク質レベルでの発現量、またはノーザンブロット法、ドットブロット法、RT-PCR法などの分子生物学的測定方法を含む任意の適切な方法により評価される本発明のポリペプチドのmRNAレベルでの発現量が挙げられる。発現量の変化とは、上記免疫学的測定方法または分子生物学的測定方法を含む任意の適切な方法により評価される本発明のポリペプチドのタンパク質レベルまたはmRNAレベルでの発現量が増加あるいは減少することを意味する。本明細書において上流という用語は、特定の基準点からポリヌクレオチドの5’末端に向かう位置を示す。本明細書において下流という用語は、特定の基準点からポリヌクレオチドの3’末端に向かう位置を示す。本明細書において相補的または相補体という用語は、本明細書では、相補領域全体がそのまま別の特定のポリヌクレオチドとWatsonCrick塩基対を形成することのできるポリヌクレオチドの配列を示す。本発明の目的で、第1のポリヌクレオチドの各塩基がその相補塩基と対になっている場合に、この第1のポリヌクレオチドは第2のポリヌクレオチドと相補であるとみなす。相補塩基は一般に、AとTあるいはAとU、またはCとGである。本願明細書では、相補という語を相補ポリヌクレオチド、相補核酸および相補ヌクレオチド配列の同義語として使用する。これらの用語は、その配列のみに基づいてポリヌクレオチドの対に適用されるものであり、2つのポリヌクレオチドが事実上結合状態にある特定のセットに適用されるものではない。好ましい実施形態の説明以下に好ましい実施形態の説明を記載するが、この実施形態は本発明の例示であり、本発明の範囲はそのような好ましい実施形態に限定されないことが理解されるべきである。当業者はまた、以下のような好ましい実施例を参考にして、本発明の範囲内にある改変、変更などを容易に行うことができることが理解されるべきである。RTYVがコードする各タンパク質の感染細胞内での挙動について、ほとんど解析がなされていないことから、個々に標的遺伝子を設定して発現抑制剤を作製し、RTYV抵抗性イネの作出を試みた。また、本発明では、コンストラクトの対象として従来の20数塩基のものではなく500塩基程度の長い配列を目的として上記抵抗性イネの作出を試みた。一局面において、本発明は、ラブドウイルス科のウイルスゲノムに存在する少なくとも1つの遺伝子の発現抑制剤を含む、ラブドウイルス科のウイルス病に抵抗性を付与するための組成物を提供する。本発明の一実施形態において、上記少なくとも1つの遺伝子をコードする核酸配列は、配列番号1NP、配列番号3P、配列番号5P3または配列番号11P6からなる群より選択され得る。一実施形態において、好ましいアンチセンス配列は、配列番号16イントロン、dofaffectinggerminationイントロンなどが挙げられるが、これらに限定されない。本発明のプロモーターは、誘導性であっても、構成的であっても、部位特異的であっても、時期特異的であってもよいが、好ましいプロモーターとしては、構成的プロモーターまたは誘導性プロモーターが挙げられる。誘導性プロモーターとしては、ストレス誘導性プロモーター例えば、感染誘導性プロモーターが好ましい。恒常性プロモーターとしては、ユビキチンプロモーター例えば、配列番号46のユビキチンプロモーター配列Genbankアクセッション番号AY452736由来、アクチンプロモーターが挙げられるが、これらに限定されない。感染誘導性プロモーターとしては、WRKY転写因子プロモーター、PR1プロモーター、PBZ1遺伝子プロモーター、ペルオキシダーゼプロモーター、マイトジェン活性化プロモーターなどが挙げられるが、これらには限定されない。本発明は、一局面において、ラブドウイルス科のウイルスゲノムに存在する少なくとも1つの遺伝子をコードする核酸配列と相補的なアンチセンス配列、トリミング配列、および該アンチセンス配列と相補的なセンス配列を含む、発現カセットを提供する。別の好ましい実施形態において、使用されるアンチセンス配列は、例えば、Invitrogenのウェブサイトにおいて利用可能なrnaidesignerhttp:www.invitrogen.co.jprnairnaidesigner.shtml、Promegaのウェブサイトにおいて利用可能なsiRNADesignerhttp:www.promega.com.siRNADesigner、AmbionのウェブサイトのsiRNATargetFinder、DharmaconのsiDESIGNCenter、GenScriptのsiRNATargetFinder、およびGenespecificsiRNAselectorこれらの方法に限定されないを使用することによって容易に設計可能である。本発明は、一局面において、上記発現カセットを含むベクターを提供する。本発明において使用されるベクターは、所望の目的発現、送達、挿入、導入などを達成する限り、どのようなベクターを用いても良いことが理解される。本発明のベクターは、目的の細胞に導入された否かを確認するために、薬剤耐性遺伝子を含み得る。薬剤耐性遺伝子としては、カナマイシン耐性を付与するためのネオマイシンフォスフォトランスフェラーゼIINPTII遺伝子、およびハイグロマイシン耐性を付与するためのハイグロマイシンフォスフォトランスフェラーゼ遺伝子などが好適に用いられ得るが、これらに限定されない。本発明は、一局面において、上記ベクターを含む植物細胞、植物体、種子を提供する。このような植物としては、どのようなものでも良いが、好ましくは、イネ黄葉ウイルスRTYVなどのラブドウイルス科のウイルスに罹患する植物であり、さらに好ましくは、イネ科植物コムギ、オオムギ、トウモロコシ、ソルガムなど、さらにより好ましくはイネ属植物、さらにより好ましくは、イネ例えば、ジャポニカ種またはインディカ種であり得る。一実施形態において、本発明の植物体は、ラブドウイルス科のウイルスに対する完全抵抗性を示す。抵抗性耐性植物の作出本発明は、一局面において、ラブドウイルス科のウイルス病に対する耐性が付与された、ラブドウイルス科のウイルスに感染し得るイネ科植物を生産する方法;ラブドウイルス科のウイルス病に対する耐性が付与された、ラブドウイルス科のウイルスに感染し得る植物の種子を生産する方法;およびラブドウイルス科のウイルス病に対する耐性が付与された、ラブドウイルス科のウイルスに感染し得る植物を再生産する方法を提供する。上記に示される方法は、本発明の発現抑制剤を、イネ科植物の細胞に導入する工程を包含する。一般的に、本発明のベクターは、種々の慣用的技術を用いて所望の植物宿主例えば、イネ科植物の細胞のゲノムに導入することができる。好ましい導入法としては、アグロバクテリウム法、ポリエチレングリコール法、エレクトロポレーション法、パーティクルガン法が挙げられるが、これらに限定されない。上記方法はさらに、ラブドウイルス科のウイルスに対して抵抗性を有する植物を選択する工程を包含する。このような選択は、抵抗性を有するトランスジェニック植物を選択することができる限り、どのような方法を用いてもよく、細胞レベルの選択でもよいし、植物体レベルの選択でもよい。本発明のベクターが導入されたか否かを確認するために、薬剤耐性遺伝子例えば、ハイグロマイシンフォスフォトランスフェラーゼ遺伝子を含むベクターの場合、上記の導入工程後に得られた細胞は、その薬剤耐性遺伝子が細胞中で発現したか否かを検出するための薬剤例えば、ハイグロマイシンを含む選択培地中で増殖させることによって選択される。当然のことながら、このような選択培地中に含まれる薬剤は、上記ベクター中に含まれる薬剤耐性遺伝子に依存して変更され得る。上記のようにして選択された細胞を、当該分野で一般的に使用される再生培地中で培養することにより、例えば、根およびシュートが確認できるまで再分化させる。このような再生培地としては、以下の実施例に記載されるような再分化培地MSREなどのような当該分野で公知の培地が挙げられるが、これらに限定されない。上記のようにして再分化させることによって得られた根およびシュートは、鉢上げされ、試験に適した時期例えば、9葉期まで、または成熟期まで生長させられることによって、トランスジェニック植物T0が作出される。さらに、このようにして得られたトランスジェニック植物中に本発明のベクターが含まれているか否かについては、上記植物から細胞を採取して全細胞DNAを得、ゲノムに組み込まれた薬剤耐性遺伝子をサザンブロットなどで、得られたトランスジェニック植物中に実際に本発明のベクターが含まれているか否かを確認できる。また、低分子RNAを得、Trigger領域をプローブにノザンブロットを行うことで、トランスジェニック植物中で実際にRNAiを誘起できていることも確認できる。さらには、得られたトランスジェニック植物に、実際にRTYVを感染させて、感染トランスジェニック植物とコントロール野生型植物とを比較することによって、本発明のベクターが含まれているか否かを検出することもできる。さらに、本発明のトランスジェニック植物は、T0植物から得られた種子、さらに後代のT1植物、T2植物、T3植物などから得ることもできる。使用別の局面において、本発明は、本発明の発現抑制剤の、ラブドウイルス科のウイルスに対する抵抗性、ラブドウイルス科のウイルス病に対する耐性を付与するための、またはその耐性もしくは抵抗性を付与する農薬を製造するための使用を提供する。ここで使用される核酸分子および因子は、本明細書において上記される任意の核酸分子であり得ることが理解される。本明細書において引用された、科学文献、特許、特許出願などの参考文献は、その全体が、各々具体的に記載されたのと同じ程度に本明細書において参考として援用される。以上、本発明を、理解の容易のために好ましい実施形態を示して説明してきた。以下に、実施例に基づいて本発明を説明するが、上述の説明および以下の実施例は、例示の目的のみに提供され、本発明を限定する目的で提供したのではない。従って、本発明の範囲は、本明細書に具体的に記載された実施形態にも実施例にも限定されず、特許請求の範囲によってのみ限定される。材料および方法以下に示す実施例において、特段の記載がない場合、一般的に、以下に記載される材料および方法を用いて実験を行った。1.イネの生育実験系統として、イネOryzasativacv.Nipponbareを使用した。イネ植物を温室20°C~32°Cにおいて栽培し、9葉期まで生育させてから、以下の実験に使用した。イネへのRTYV接種試験においては、各形質転換体系統およびコントロールの野生型イネのいずれも、2~3葉期まで生育させてから使用した。なぜなら、RTYVの病徴は新しく展開した葉において観察される、すなわち、イネの生育期において、2~3葉期がRTYVに対する感受性が最も高いと考えられるからである。2.培地および試薬0N6-ビタミン1.2Lグリシン2gニコチン酸0.5gピリドキシンHCl0.5gチアミンHCl1gミオイノシトール100g蒸留水で1.2Lにする。1.2mlずつ分注し、使用時まで-20°Cで保存する。1MS-ビタミン1.2Lニコチン酸0.5gピリドキシンHCl0.5gチアミンHCl0.1gミオイノシトール100g蒸留水で1.2Lにする。1.2mlずつ分注し、使用時まで-20°Cで保存する。2カルス誘導培地N6D1Lスクロース30gカザミノ酸0.3gChuBasalSaltMixturePowderSigma社から購入3.981gプロリン2.9gN6-ビタミン1.2ml2,4-D0.1MKOH中1mg/ml2ml1NKOHでpH5.8に調節して、蒸留水で1Lにする。ゲルライト4gを加えて、オートクレーブにかける。3共存培養培地N6CO1Lスクロース30gグルコース10gカザミノ酸0.3gChuBasalSaltMixturePowder3.981gN6-ビタミン1.2ml2,4-D0.1MKOH中1mg/ml2ml1NKOHでpH5.2に調節し、蒸留水で1Lにする。ゲルライト4gを加えてオートクレーブにかける。温度が50°C未満に下がるまで待ってから、アセトシリンゴン50mg/mlを400μl加える。4選抜培地N6SE1Lスクロース30gカザミノ酸0.3gChuBasalSaltMixturePowderSigma社から購入3.981gプロリン2.9gN6-ビタミン1.2ml2,4-D0.1MKOH中1mg/ml2ml1NKOHでpH5.8に調節して、蒸留水で1Lにする。ゲルライト4gを加えて、オートクレーブにかける。温度が50°C未満に下がるまで待ってから、カルベニシリン250mg/ml2mlおよびハイグロマイシン50mg/ml0.5mlを添加する。5再分化培地MSRE1Lスクロース30gD-ソルビトール30gカザミノ酸2gムラシゲスクーグ植物培地用混合塩類和光純薬社から購入4.4gMS-ビタミン1.2mlカイネチンDMSO中10mg/ml0.2mlα-ナフタレン酢酸NAADMSO中1mg/ml0.2ml1NKOHでpH5.8に調節して、蒸留水で1Lにする。ゲルライト4gを加えて、オートクレーブにかける。温度が50°C未満に下がるまで待ってから、カルベニシリン250mg/ml1mlおよびハイグロマイシン50mg/ml0.5mlを添加する。6ホルモンフリーHF培地1Lスクロース30gムラシゲスクーグ植物培地用混合塩類和光純薬社から購入4.4gMS-ビタミン1.2ml1NKOHでpH5.8に調節して、蒸留水で1Lにする。ゲルライト4gを加えて、オートクレーブにかける。温度が50°C未満に下がるまで待ってから、ハイグロマイシン50mg/ml0.5mlを添加する。実施例1:RTYVのleader配列、leader配列NP遺伝子、NP遺伝子、P遺伝子、P3遺伝子、M遺伝子、G遺伝子、P6遺伝子、L遺伝子およびL遺伝子trailer配列を用いたRNAi誘起ベクターの構築1RTYVのleader配列、leader配列NP遺伝子、NP遺伝子、P遺伝子、P3遺伝子、M遺伝子、G遺伝子、P6遺伝子、L遺伝子およびL遺伝子trailer配列を、特異的なプライマーセットを用いて増幅する:RTYV感染イネの葉から、定法に従って総RNAを抽出した。総RNAの抽出は、RNeasyPlantMiniKitQiagenを使用して、添付の説明書に従って行った。総RNA1μgを用いて、SuperScriptIIIInvitrogenのマニュアルに従って逆転写反応を行い、cDNAを合成し、以下のプライマーセット:triggerleaderについてプライマーセット1:フォワードプライマー:CACCACACCACCAGATACATTC配列番号26;とリバースプライマー:TTTTTAAATCCTATCTCTTATTGACAT配列番号27、triggerleaderNPについてプライマーセット2:フォワードプライマー:CACCACACCACCAGATACATTC配列番号26;とリバースプライマー:GCATGCTATCTTTACGATGCTTC配列番号28、TriggerNPについてプライマーセット3:フォワードプライマー:CACCAACACCACATTAATCATG配列番号29;とリバースプライマー:ACATATAAACGCAATGGCGCG配列番号30、TriggerPについてプライマーセット4:フォワードプライマー:CACCAACACCTCATCACAAC配列番号31;とリバースプライマー:CTATGTTGGTACATTCGGCC配列番号32、TriggerP3についてプライマーセット5:フォワードプライマー:CACCAACTCCACATAGAAGG配列番号33;とリバースプライマー:TGTCTTGTATAAACCCGCCC配列番号34、triggerMについてプライマーセット6:フォワードプライマー:CACCAACACCACATAATAAACA配列番号35;とリバースプライマー:TATACTGTGGTAATGATCTCTC配列番号36、triggerGについてプライマーセット7:フォワードプライマー:CACCAACAACATCATACGTATC配列番号37;とリバースプライマー:GACTGTGCTGTTTATGGCCC配列番号38triggerP6についてプライマーセット8:フォワードプライマー:CACCAATACCTCAACATTCTCAA配列番号39;とリバースプライマー:TTATTTAATATACCAAGTCTTATGC配列番号40triggerLについてプライマーセット9:フォワードプライマー:CACCAACATATCCATTTTTCATTTC配列番号41;とリバースプライマー:AAAGAAGTGATATGCACCTGCG配列番号42triggertrailerLについてプライマーセット10:フォワードプライマー:CACCCTGGACTGTGACGAGA配列番号43;とリバースプライマー:ACACCACCATATCCAAAGCCG配列番号44を用いてそれぞれPCRを行う。Triggerleader、TriggerP3あるいはTriggerP6に特異的なプライマーセットを用いてPCRを行い、目的の領域の増幅産物を得る。上記実施例12に記載されるように、上記で得た増幅産物を、pENTRTMDTOPO登録商標クローニングキットInvitrogencat.K243520を用いて、製造業者の説明書に従ってpENTRDTOPOInvitrogenにクローン化し、エントリーベクターpENTRTriggerP、pENTRTriggerP3あるいはpENTRTriggerP6を得る。このクローニングベクターを、同様に上記実施例12に記載されるようにE.coli株に形質転換し、形質転換E.coliを50μg/mlカナマイシンを含むLBプレート上で選択する。定法に従って、単一のコロニーを単離してこのクローニングベクターを含む形質転換E.coliを増殖させる。形質転換体からプラスミドDNAを単離し、配列決定することによって、目的の領域がクローニングされていることを確認する。上記のようにして得られたプラスミドDNAを、上記実施例1に記載されるように、GatewayInvitrogenシステムのLRクロナーゼ反応系を用いて、pANDAベクター奈良先端大学院大学島本教授より分譲へクローン化する。実施例2に記載されるようにRTYV抵抗性イネを作出し、T0イネの各々を1株とする。それぞれの株から全てのT1種子を回収する。イネへのRTYVの日本株および中国株RYSVの接種は、各形質転換体系統につきT1イネおよそ10株に対して、約20がRTYV各株を保毒したツマグロヨコバイの成虫を健全イネ1株当たり5頭以上になるように放飼、26°C程度の温室で約2日間イネを吸汁させて行う。これらの実験を行うことによって、中国株RYSV株の情報に基づいて設計したTriggerP、TriggerP3あるいはTriggerP6を含む発現抑制剤は、RTYVの中国株RYSV感染に対する抵抗性のみならず、RTYVの中国株RYSV以外の株感染に対する抵抗性も付与することを確認することができる。以上のように、本発明の好ましい実施形態を用いて本発明を例示してきたが、本発明は、特許請求の範囲によってのみその範囲が解釈されるべきであることが理解される。本明細書において引用した特許、特許出願および文献は、その内容自体が具体的に本明細書に記載されているのと同様にその内容が本明細書に対する参考として援用されるべきである。"