AzoarucsspDN11株を検出する方法であって、環境試料より抽出したDNAを鋳型とし、配列番号1に示される塩基配列における219~248位の領域の全部または一部の塩基配列からなるセンスプライマーと、配列番号1に示される塩基配列における339~368位の領域の全部または一部の塩基配列の相補配列からなるアンチセンスプライマーとから構成されるプライマーセットを用いてベンゼンモノオキシゲナーゼ遺伝子をPCR増幅する工程と、増幅したDNA断片を検出する工程を含む、上記方法。前記センスプライマーが、配列番号2に示される塩基配列からなるオリゴヌクレオチドであり、前記アンチセンスプライマーが、配列番号3に示される塩基配列からなるオリゴヌクレオチドである、請求項1に記載の方法。前記DNA断片の検出を、配列番号1に示される塩基配列における282~311位の領域の全部または一部の塩基配列またはそれらの相補配列からなるオリゴヌクレオチドからなるブローブとのハイブリダイゼーションにより行う、請求項1または2に記載の方法。前記オリゴヌクレオドが、配列番号4に示される塩基配列からなるオリゴヌクレオチドである、請求項3に記載の方法。前記DNA断片の検出を、リアルタイムPCRによって定量的に行う、請求項1から4のいずれかに記載の方法。請求項5に記載の方法を用いてベンゼン汚染サイト内のAzoarucsspDN11株の菌数を定量し、AzoarucsspDN11株をモニタリングする方法。請求項5に記載の方法を用いてベンゼン汚染サイト内のAzoarucsspDN11株の菌数を定量し、AzoarucsspDN11株によるベンゼン汚染サイトの浄化もしくは修復の程度を評価する方法。AzoarucsspDN11株の検出用プライマーセットであって、配列番号1に示される塩基配列における219~248位の領域の全部または一部の塩基配列からなるセンスプライマーと、配列番号1に示される塩基配列における339~368位の領域の全部または一部の塩基配列の相補的配列からなるアンチプライマーとから構成される、上記プライマーセット。前記センスプライマーが、配列番号2に示される塩基配列からなるオリゴヌクレオチドであり、前記アンチセンスプライマーが、配列番号3に示される塩基配列からなるオリゴヌクレオチドである、請求項8に記載のプライマーセット。AzoarucsspDN11株の検出用プローブであって、配列番号1に示される塩基配列における282~311位の領域の全部または一部の塩基配列またはそれらの相補配列からなるオリゴヌクレオチドからなる上記ブローブ。前記オリゴヌクレオドが、配列番号4に示される塩基配列からなるオリゴヌクレオチドである、請求項10に記載のプローブ。請求項8または9に記載のプライマーセット、および、請求項10または11に記載のブローブを含む、AzoarucsspDN11株の検出用キット。本発明の課題は、好気嫌気両条件下でベンゼンを分解できるAzoarucsspDN11株を複合生物系から正確、迅速、かつ簡便に検出し、定量する手段を提供することにある。本発明者らは、上記課題を解決するために鋭意研究を重ねた結果、好気的ベンゼン分解遺伝子のユニバーサルプライマーBaldwinBRetalApplEnvironMicobiol200369p33503358を用いてAzoarucsspDN11株のゲノムDNAからPCR、クローニング、およびシーケンス解析を実施したところ、配列番号1に示されるベンゼンモノオキシゲナーゼ遺伝子を保有していることが明らかとなった。その遺伝子情報についてBLASTIN及びBLASTP解析を行ったところ、DN11株に特異的な領域を見出した。さらに、その特異的な領域の配列をもとにプライマーおよびプローブを設計し、それらを用いてリアルタイムPCRを行ったところ、DN11株を正確に検出し、定量化できることを確認した。本発明はかかる知見により完成されたものである。すなわち、本発明は以下の発明を包含する。AzoarucsspDN11株を検出する方法であって、環境試料より抽出したDNAを鋳型とし、配列番号1に示される塩基配列における219~248位の領域の全部または一部の塩基配列からなるセンスプライマーと、配列番号1に示される塩基配列における339~368位の領域の全部または一部の塩基配列の相補配列からなるアンチセンスプライマーとから構成されるプライマーセットを用いてベンゼンモノオキシゲナーゼ遺伝子をPCR増幅する工程と、増幅したDNA断片を検出する工程を含む、上記方法。前記センスプライマーが、配列番号2に示される塩基配列からなるオリゴヌクレオチドであり、前記アンチセンスプライマーが、配列番号3に示される塩基配列からなるオリゴヌクレオチドである、に記載の方法。前記DNA断片の検出を、配列番号1に示される塩基配列における282~311位の領域の全部または一部の塩基配列またはそれらの相補配列からなるオリゴヌクレオチドからなるブローブとのハイブリダイゼーションにより行う、またはに記載の方法。前記オリゴヌクレオドが、配列番号4に示される塩基配列からなるオリゴヌクレオチドである、に記載の方法。前記DNA断片の検出を、リアルタイムPCRによって定量的に行う、からAzoarucsspDN11株の検出用プライマーセットであって、配列番号1に示される塩基配列における219~248位の領域の全部または一部の塩基配列からなるセンスプライマーと、配列番号1に示される塩基配列における339~368位の領域の全部または一部の塩基配列の相補的配列からなるアンチプライマーとから構成される、上記プライマーセット。前記センスプライマーが、配列番号2に示される塩基配列からなるオリゴヌクレオチドであり、前記アンチセンスプライマーが、配列番号3に示される塩基配列からなるオリゴヌクレオチドである、に記載のプライマーセット。AzoarucsspDN11株の検出用プローブであって、配列番号1に示される塩基配列における282~311位の領域の全部または一部の塩基配列またはそれらの相補配列からなるオリゴヌクレオチドからなる上記ブローブ。前記オリゴヌクレオドが、配列番号4に示される塩基配列からなるオリゴヌクレオチドである、に記載のプローブ。またはまたは11に記載のブローブを含む、AzoarucsspDN11株の検出用キット。本発明によれば、ベンゼンモノオキシゲナーゼ遺伝子を指標として好気嫌気両条件下でベンゼンを分解できるAzoarucsspDN11株を正確、迅速、かつ簡便に検出および定量する方法が提供される。AzoarucsspDN11株が有するベンゼンモノオキシゲナーゼ遺伝子の塩基配列と高い相同性を示す他の微生物の同遺伝子は存在しないことから、本発明の方法を用いることにより、AzoarucsspDN11株を未知の菌を多数含む天然菌叢中でも特異的に検出できる。また、本発明の方法を用いることにより、ベンゼン汚染サイトに対してAzoarucsspDN11株によるバイオオーグメンテーションを実施するにあたり、AzoarucsspDN11株の生育や活性の確認、浄化処理状況のモニタリングなどが可能になる。本発明のベンゼン分解菌AzoarucsspDN11株以下、単にDN11株と記載する場合があるの検出方法は、環境試料より抽出したDNAを鋳型とし、DN11株のゲノム中に存在するベンゼンモノオキシゲナーゼ遺伝子上の特異的な領域の塩基配列をプライマーとして用いてベンゼンモノオキシゲナーゼ遺伝子の部分塩基配列をPCR増幅する工程と、増幅されたDNA断片を検出する工程を含む。上記ベンゼンモノオキシゲナーゼ遺伝子は、配列番号1に示される塩基配列を有するベンゼンの好気的分解に関わる遺伝子であり、16SrRNA遺伝子と比較して近縁種との塩基配列の差が大きいことを特徴とするBLASTN検索:httpblastddbjnigacjptopjhtml。まず、増幅工程に用いるプライマーは、ベンゼンモノオキシゲナーゼ遺伝子の特異的な領域に設計され、該領域の全部または一部の塩基配列からなる。ベンゼンモノオキシゲナーゼ遺伝子の特異的な領域は、配列番号1に示される塩基配列における219~248位と339~368位の領域をいい、それぞれ配列番号5に示されるアミノ酸配列の73~82位に存在するTrpIleValAlaGlnPheGluArgAlaLeu配列番号6、113~122位に存在するTyrTrpArgProThrValTrpTrpAsnPro配列番号7をコードする。プライマーとして上記領域の一部の塩基配列を用いる場合、その長さは特に制限はされないが、15~25塩基、好ましくは20~25塩基程度である。PCR増幅の際には、上記のプライマーを組み合わせてプライマーセットとして用いる。センスプライマーには上流側に位置するTrpIleValAlaGlnPheGluArgAlaLeu配列番号6で表されるアミノ酸配列をコードする塩基配列を使用し、また、アンチセンスプライマーには下流側に位置するTyrTrpArgProThrValTrpTrpAsnPro配列番号7で表されるアミノ酸配列をコードする塩基配列を使用する。上記アミノ酸配列6及び7をコードする塩基配列はそのままプライマーとして用いてもよく、あるいはこれらを基にプライマーを設計してもよい。本発明の方法に用いるセンスプライマーの好ましい例として、5’TGGATTGTGGCGCAGTTCGAACGCGCCCTG3’配列番号2からなるオリゴヌクレオチド、アンチセンスプライマーの好ましい例として、5’CGGATTCCACCATACCGTCGGGCGCCAGTA3’配列番号3からなるオリゴヌクレオチドが挙げられる。これらのオリゴヌクレオチドは、実質的に同一の機能を有する範囲で、その配列に改変欠失、置換、挿入、又は付加を加えてもよい。欠失等させるオリゴヌクレオチドの数は特に限定されないが、通常、5個以下、好ましくは3個以下、さらに好ましくは1個である。また、ヌクレオチドの付加は、3’側でも5’側でもよい。上記のセンスプライマーとアンチセンスプライマーを組み合わせてPCRを行うことにより、ベンゼンモノオキシゲナーゼ上の配列番号6のアミノ酸配列と配列番号7のアミノ酸配列に挟まれるアミノ酸配列をコードするベンゼンモノオキシゲナーゼの部分塩基配列を有するDNA断片を増幅することができる。本発明の方法で使用するセンスプライマーとアンチセンスプライマーは、オリゴヌクレオチドの合成法として当技術分野で公知の方法、例えば、ホスホトリエステル法、ホスホジエステル法、エチルホスホアミダイト法などの方法により、通常用いられるDNA自動合成装置例えば、AppliedBiosystems社製Model394などを利用して合成することが可能である。また、検出の対象となる環境試料としては、ベンゼンの汚染可能性のあるものであればよく、特に制限されないが、ベンゼンにより汚染された土壌、河川の底土、地下水、貯水、海水、河川水、排水処理施設下水汚水工場排水農業排水などの処理施設から採取した水や活性汚泥、前記排水処理施設周辺の土壌、浅海干潟域の土壌、河川湖沼域の土壌などが挙げられる。環境試料からのDNAの抽出は、微生物の培養物からの核酸抽出法として当業者に公知のいかなる方法を用いてもよく、例えば、フェノールクロロホルムによる抽出や、市販のDNA抽出試薬を用いる抽出により行うことができる。あるいは、市販のカラムキットQIAGEN社QIAampDNABloodMidiKit、QIAGEN社DNeasyTissueKitなどを用いて抽出を行ってもよい。本発明の方法において、PCRは常法に従って行うことができる。例えば、鋳型DNA、上記センスプライマー及びアンチセンスプライマー、4種の塩基dNTP、および耐熱性DNAポリメラーゼの存在下、変性、アニーリング及び伸長を1サイクルとして、通常20~40サイクルを実施することにより行う。変性は、二本鎖DNAを一本鎖に解離するための処理であり、通常94~96°C、15秒~5分間の処理を行う。アニーリングは、一本鎖の鋳型DNAに、それに相補的なプライマーをアニーリングする処理であり、使用するプライマーに応じて設定されるTm値以下の温度、例えば50~65°Cで、30秒~2分間の処理を行う。伸長反応は、鋳型DNAに沿ってプライマーを伸長する反応であり、通常72°Cで30秒~10分間の処理を行う。Tm値は、使用するプライマーの塩基配列に基づいて当業者が適宜設定することができる。本発明の検出方法において、プライマーの特異的な結合を保証するために、アニーリングの温度はTm値5°C以上の温度であることが好ましい。このようなPCRの一連の操作は、市販のPCRキットやPCR装置を利用して、その操作説明書に従って行うことができる。PCR装置は、例えば、GeneAmpPCRSystem9700AppliedBiosystems社製、GeneAmpPCRSystem9600AppliedBiosystems社製などが使用できる。また、PCR増幅産物の検出を容易にするために、プライマーに予め標識物質をつけてもよいし、あるいは、PCR時に修飾ヌクレオチドジゴキシゲニンDIG標識ヌクレオチド等を基質として使用してもよい。次に、PCRにより増幅したDNA断片の検出を行う。当該DNA断片の検出結果増幅の有無、増幅量をもとに、試料中のAzoarucsspDN11株を検出および定量できる。本明細書においてAzoarucsspDN11株を検出するとは、単に環境試料中にAzoarucsspDN11株が存在するか否かを判定するだけではなく、AzoarucsspDN11株が環境試料中にどのくらい存在するかを判定することすなわち定量的検出をも含む。本発明において、PCRにより増幅したDNA断片PCR産物は当分野において一般的に実施されている方法により、検出することができる。PCR産物の検出方法としては、たとえば、アガロースゲルなどを用いる電気泳動法、標識プローブを用いるハイブリダイゼーション法、PCR-ELISA法などが挙げられるが、標識プローブを用いるハイブリダイゼーション法が好ましい。プローブとしては、上記のプライマーセットにより増幅されるDNA断片の塩基配列にハイブリダイズでき、かつ長さが少なくとも10塩基以上、好ましくは20塩基以上、さらに好ましくは25塩基以上のオリゴヌクレオチドを設計するとよい。具体的には、配列番号1に示される塩基配列における282~311位の領域配列番号5に示されるアミノ酸配列の94~103位に存在するGluGlnPheLeuAlaAspLeuAsnGluThr配列番号8をコードする領域の全部または一部の塩基配列またはそれらの相補配列からなるオリゴヌクレオチドがプローブとして使用できる。本発明の方法に用いるブローブの好ましい例としては、5’GAACAGTTCCTGGCAGACCTCAATGAAACT3’配列番号4からなるオリゴヌクレオチドが挙げられるが、実質的に同一の機能を有する範囲で、その配列に改変欠失、置換、挿入、又は付加を加えてもよい。欠失等させるオリゴヌクレオチドの数は特に限定されないが、通常、5個以下、好ましくは3個以下、さらに好ましくは1個である。また、ヌクレオチドの付加は、3側でも5側でもよい。また、プローブの標識物質としては、当該技術分野においてよく知られる蛍光物質、放射性同位体、化学発光物質、酵素、ビオチン等を用いることができる。標識プローブを用いるハイブリダイゼーション法としては、例えば、ドットハイブリダイゼーション、リアルタイムPCR、FISH法蛍光insituハイブリダイゼーション法などが挙げられ、直接的な検出又は定量的検出が可能である。標識プローブによる検出はまた、スライドガラス、シリコン、ナイロン膜などの基板上に検出対象を固定したマイクロアレイ法によっても実施できる。リアルタイムPCRは、増幅したDNA断片の検出を定量的に行うことが可能である点で好ましい。リアルタイムPCRは、リアルタイムPCR装置を用いてPCRを行い、PCRによる増幅を継時的に測定することで、増幅率に基づいて鋳型となるDNAの定量を行う手法である。リアルタイムPCRでは、PCR増幅産物は蛍光により行うが、蛍光検出はインターカレーターを用いる方法と蛍光標識プローブTaqMan法を用いる方法があり、いずれも常法に従って実施することができる。インターカレーター法は、二本鎖DNAに結合して蛍光を発する試薬SYBRGreenIを添加してPCR反応系に添加してPCRを行い、SYBRGreenIが二本鎖DNAに結合したときに発する蛍光強度を測定することにより増幅産物量をサイクル毎にモニターすることが可能である。また、TaqMan法は、5末端を蛍光物質FAMなどで、3末端をクエンチャー物質TAMRAなどで修飾したオリゴヌクレオチドプローブをPCR反応系に添加してPCRを行う。本発明はまた、上記の検出方法を用いてベンゼン汚染サイト内のAzoarucsspDN11株の菌数を定量することによって、AzoarucsspDN11株をモニタリングする方法、および、上記の検出方法を用いてベンゼン汚染サイト内のAzoarucsspDN11株の菌数を定量することによって、AzoarucsspDN11株によるベンゼン汚染サイトの浄化もしくは修復の程度を評価する方法を提供する。例えば、上記の検出方法を用いてベンゼン汚染サイト中に存在する、またはベンゼン汚染サイトに導入したDN11株の菌数を経時的に定量することにより、ベンゼン汚染サイトにおけるDN11株の挙動や全微生物群集に占める割合優占度をモニタリングできる。このモニタリング結果DN11株の増減等に基づき、ベンゼン汚染サイトに導入するDN11株の量を調整すれば、より効率的なバイオレメディエーションが可能となる。また、DN11株のモニタリングと、汚染物質であるベンゼンのモニタリングを同時に行うことにより、DN11株導入によるベンゼン汚染サイトの浄化もしくは修復の進み具合を調査することができる。本発明の検出方法では、上記のようにPCR増幅したベンゼンモノオキシゲナーゼ遺伝子産物の塩基配列を決定する工程をさらに含んでもよい。増幅されたDNA断片の塩基配列は、ジデオキシ法等の公知の塩基配列決定法により求めることができる。ベンゼンモノオキシゲナーゼ遺伝子の塩基配列は同属種間あるいは株間で異なっており、その相違度は、同一種間で比較を行った場合、16SrRNA遺伝子の塩基配列に比べ顕著に高く、このため、16SrRNA遺伝子のように複数のプライマーを用いて長い塩基配列を決定する必要がない。本発明はまた、AzoarucsspDN11株の検出方法に利用されるプライマープライマーセット及びプローブをも提供する。これらのプライマープライマーセット及びプローブについては、前述の通りである。上記プライマーセットおよびプローブはキット化することもできる。本発明のキットは、上記のプライマーセットおよびプローブを含むものであればよく、必要に応じて、DNA抽出用試薬、PCR用緩衝液やDNAポリメラーゼ等のPCR用試薬、反応の陽性コントロールとなるPCR増幅領域を含むDNA溶液、固相マイクロプレートなど、説明書などを含んでいてもよい。以下、実施例により本発明をさらに具体的に説明する。但し、本発明はこれら実施例に限定されるものではない。実施例1任意の地下水にAzoarucsspDN11株を混合し、全菌数に対するAzoarucsspDN11株の混合比後記表3参照が異なる4種のサンプル:DN11株を混合しない地下水、DN11株を105cellsml混合した地下水、DN11株を106cellsml混合した地下水、DN11株の純粋培養液を調製した。これらのサンプル10mlからDNAをCurrentProtocolsinMicrobiologyの手法に従って抽出した。抽出したDNAに対し、図1に示すプライマー設計領域の塩基配列をもとに作成したセンスプライマーbmoFw5’TGGATTGTGGCGCAGTTCGAACGCGCCCTG3’:配列番号2とアンチセンスプライマーbmoRv5’CGGATTCCACCATACCGTCGGGCGCCAGTA3’:配列番号3、さらに3’側を蛍光物質FAMと5’側をクエンチャー物質TAMRAにて修飾したプローブbmop5’GAACAGTTCCTGGCAGACCTCAATGAAACT3’:配列番号4を使用し、ベンゼンモノオキシゲナーゼ遺伝子のコピー数を絶対定量するための定量的リアルタイムPCR増幅試験を行った。絶対定量の検量線作成のために、図1に示した塩基配列配列番号1をpGEMTEasyPromegaプラスミドにクローニングしたものを使用し、104~109コピーのものを同時に定量的リアルタイムPCRに供した。PCR反応液の組成は下記表1に示す通りである。PCR反応では、まず反応液を96°Cで10分間初期変性反応を行った。続いて変性反応96°C30秒、アニーリング反応65°C30秒、伸長反応72°C30秒を1サイクルとした一連の反応を40サイクル分実施した。リアルタイムPCR反応装置はABI製7500Fastを使用し、増幅シグナルの検出はTaqManProbeTM法で行った。比較として、従来の16SrRNA遺伝子の特異的領域arzと原核生物にユニバーサルな16SrRNA遺伝子の領域ユニバーサルを定量できる定量的リアルタイムPCRを実施した。前者のPCRには、arzFw5’CGTTCGGAGAGGTAACTCACT3’:配列番号9とarzRv5’CCGCATCTCTGCAGGATT3’:配列番号10のプライマーを使用し、後者のPCRには、Univ261Fw5’AGCTAGTTGGTGGGGT3’:配列番号11とUniv342Rv5‘CTGCTGCSYCCCGTAG3’:配列番号12のプライマーを使用した。絶対定量の検量線作成のために、DN11株の16SrRNA遺伝子全長をpGEMTEasyPromegaプラスミドにクローニングしたものを使用し、104~109コピーのものを同時に定量的リアルタイムPCRに供した。定量的リアルタイムPCRの反応組成は下記表2に示すとおりである。PCR反応では、まず反応液を96°Cで10分間初期変性反応を行った。続いて変性反応96°C30秒、アニーリング反応50°C30秒、伸長反応72°C30秒を1サイクルとした一連の反応を40サイクル分実施した。こちらの増幅シグナルの検出はSYBRGreenIを使用したインターカレーター法で行った。各サンプルからの遺伝子増幅コピー数を下記表3に示す。DN11株菌数全菌数比表3、左から3番目の欄とbmoコピー数16SrRNAユニバーサルコピー数の比表3、一番右の欄がほぼ一致したのに対し、従来の16Sarzコピー数16SrRNAユニバーサルコピー数の比表3、右から2番目の欄はそれよりも高く、またDN11株を混合していない系からも高い検出値が確認された。これはarzプライマーの設計位置が16SrRNA遺伝子上であり、近縁種と配列に大差がない領域であることから、特異的に欠け、DN11株以外のAzarcus属細菌がカウントされたためと考えられる。以上より、本発明において設計したベンゼンモノオキシゲナーゼ遺伝子上のプライマーおよびプローブを使用したPCRを実施することにより、AzarcusDN11株をより特異的に検出でき、混合系であっても確実なモニタリングができることが示された。