固形媒体を獲得すること及び遺伝材料を固形媒体から次の媒体へ直接的に電気溶出することを含む、固形媒体上に保存された生物学的試料から遺伝材料を抽出する方法であって、生物学的試料が固形媒体上にアプライされ、固形媒体が生物学的試料を溶解して遺伝材料を保持する化学物質を含む、方法。固形媒体がセルロース系材料を含む、請求項1記載の方法。電気溶出の前に固形媒体をすすぐことを含む、請求項1記載の方法。固形媒体のすすぎが固形媒体をバッファー中に浸漬させること又はバッファーを固形媒体の中を通して若しくは固形媒体を横切らせて流すことを含む、請求項3記載の方法。固形媒体のすすぎが固形媒体を水中に浸漬させること又は水を固形媒体の中を通して若しくは固形媒体を横切らせて流すことを含む、請求項3記載の方法。電気溶出の前に遺伝材料を修復することをさらに含む、請求項3記載の方法。遺伝材料の修復がDNAポリメラーゼ及びDNAリガーゼを少なくとも含有する溶液をアプライすることを含む、請求項6記載の方法。DNAポリメラーゼがDNAポリメラーゼ活性、プルーフリーディングのための3’→5’エキソヌクレアーゼ活性及びニックトランスレーションのための5’→3’エキソヌクレアーゼ活性を含む、請求項7記載の方法。遺伝材料の修復が、脱塩基部位に隣接するDNAにニックを入れるエンドヌクレアーゼを少なくとも含有する溶液をアプライすることを含む、請求項6記載の方法。生物学的試料が、固定された細胞を含む、請求項1記載の方法。固形媒体から電気溶出する前に固定された細胞を加工することを含み、加工が固定された細胞を再水和すること、固定された細胞をプロテアーゼ処理すること又は脱架橋することを含む、請求項10記載の方法。次の媒体が電気泳動ゲル、溶液又は捕捉表面を含む、請求項1記載の方法。固定化組織試料の少なくとも一部を固形媒体にアプライすること及び遺伝材料を固形媒体から次の媒体へ直接的に電気溶出することを含む、固形媒体上に保存された固定化組織試料から遺伝材料を抽出する方法であって、固形媒体が組織試料を溶解すること又は遺伝材料を保持することが可能な化学物質を含む、方法。固形媒体がセルロース系の紙を含む、請求項13記載の方法。固形媒体がFTA登録商標紙を含む、請求項13記載の方法。固定化組織試料を固形媒体にアプライする前又は後に固定化組織試料をプロテアーゼで処理することを含む、請求項13記載の方法。固形媒体が固定化組織試料を溶解する化学物質を含む、請求項13記載の方法。固定化組織試料を固形媒体にアプライする前に固定化組織試料を再水和することを含む、請求項13記載の方法。固定化組織試料を固形媒体にアプライする前に又はその後に遺伝材料とタンパク質との間を脱架橋することを含む、請求項18記載の方法。脱架橋が求核試薬を含むpHが7.0以外の架橋修復バッファーをアプライすることを含む、請求項19記載の方法。電気溶出の前に遺伝材料を修復することを含む、請求項14記載の方法。遺伝材料の修復がDNAポリメラーゼI及びDNAリガーゼを少なくとも含有する溶液をアプライすることを含む、請求項21記載の方法。遺伝材料の修復が、脱塩基部位に隣接するDNAにニックを入れるエンドヌクレアーゼを少なくとも含有する溶液をアプライすることを含む、請求項21記載の方法。次の媒体が電気泳動ゲル、溶液又は捕捉表面を含む、請求項13記載の方法。セルロース系紙を獲得すること、セルロース系紙上でDNAを修復すること及びDNAをセルロース系紙から電気泳動ゲル中へ直接的に電気溶出することを含む、セルロース系紙上に保存された生物学的試料からDNAを抽出する方法であって、生物学的試料がセルロース系紙上にアプライされ、セルロース系紙が生物学的試料を溶解してDNAを保持する化学物質を含む、方法。第1の実施形態では、固形媒体上に保存された生物学的試料から遺伝材料を抽出する方法が提供される。本方法は固形媒体を獲得することを包含し、ここで生物学的試料は固形媒体上にアプライされ、固形媒体は生物学的試料を溶解して遺伝材料を保持する化学物質を包含する。本方法はまた、遺伝材料を固形媒体から次の媒体へ直接的に電気溶出することを包含する。第2の実施形態では、固形媒体上に保存された固定化組織試料から遺伝材料を抽出する方法が提供される。本方法は固定化組織試料の少なくとも一部を固形媒体にアプライすることを包含し、ここで固形媒体は細胞を溶解すること又は遺伝材料を保持することが可能な化学物質を包含する。本方法は遺伝材料を固形媒体から次の媒体へ直接的に電気溶出することをさらに包含する。第3の実施形態では、セルロース系紙上に保存された生物学的試料からDNAを抽出する方法が提供される。本方法はセルロース系紙を獲得することを包含し、ここで生物学的試料はセルロース系紙上にアプライされ、セルロース系紙は生物学的試料を溶解してDNAを保持する化学物質を包含する。本方法はまた、DNAをセルロース系紙から電気泳動ゲル中へ直接的に電気溶出することを包含する。本発明のこれら及び他の特徴、態様及び利点は、添付の図面に関する以下の詳細な説明を読むことでより良く理解されるようになるが、この図中では同種の文字は図面全体を通じて同種の部分を表す。以下に詳細に論じられるように、本発明の実施形態は、遺伝材料例としてDNAを固形媒体例として化学的に処理されたセルロース基材上に保存された生物学的試料から電気溶出を用いて直接的に抽出する方法を包含する。1つの実施形態では、方法は、予め固形媒体上にアプライされ乾燥された保存生物学的試料を包含する固形媒体を獲得することを包含する。固形媒体は、生物学的試料を溶解して遺伝材料を保持する化学物質を包含する。方法はまた、固形媒体から化学物質を除去した後に遺伝材料を固形媒体から次の媒体へ直接的に電気溶出することを包含する。次の媒体としては、電気泳動ゲル、溶液又は捕捉表面例としてブロッティングメンブランを挙げることができる。あるいは、固定された細胞又は組織試料を固形媒体にアプライしてもよい。固定された試料を固形媒体へのアプライの前又は後に加工してもよい。例えば、固定された試料の加工としては、固定された試料の再水和及び/又は溶解が挙げられる。固定されてもされなくても、試料を固形媒体へのアプライの後でさらに加工することができる。特に、遺伝材料が固形媒体上で一定の位置にある間に、遺伝材料内のニック及び脱塩基部位の修復を行うことができる。上記の方法は、生物学的試料を溶解し、生物学的試料からDNAを抽出し、DNAを表面に結合させ、DNAを洗浄し、及び高分子量例として10キロベース以上であってあまり断片化されていないDNAを溶出するための単一のプラットフォームを提供する。固形媒体から遺伝材料を直接的に電気溶出する能力は、DNAの抽出に通常用いられる洗浄剤の使用を回避し、同様に洗浄剤を除去し、及びDNAをその後の分析のために使用可能にするのに必要な余分の段階を回避する。加えて、高温を用いることなく固形媒体から遺伝材料を直接的に電気溶出することで、DNAの断片化が低減する。本発明より前は、研究者は、固形媒体上に結合したDNAを分析するため、DNAが置かれた固形媒体をその後の遺伝的分析反応例としてPCR中に直接加えなければならなかった。固形媒体からのDNAの溶出により遺伝材料の評価を可能にするのはたった1つの反応に限らないことが認識できる。全体として、開示された実施形態は、固形媒体からのDNAの抽出におけるユーザーの作業を低減し、一方でDNAの質及び利用可能性を向上させる。以下の実施形態では用いられる生物学的試料としては、生理学的/病理学的体液例として分泌物、排出物、滲出物及び浸出物又は細胞懸濁物例として血液、リンパ液、滑液、精液、口腔細胞を含有する唾液、皮膚切屑、毛根細胞など、ヒト及び動物の細胞懸濁物の液体抽出物又はホモジネート;植物の生理学的/病理学的液体又は細胞懸濁物;細菌、真菌、プラスミド、ウイルスなどの液体生産物、抽出物又は懸濁物;寄生蠕虫、原虫、スピロヘータなどを包含する寄生生物の液体生産物、抽出物又は懸濁物;ヒト又は動物の体組織例として骨、肝臓、腎臓など;DNA又はRNA合成の媒体;化学的又は生化学的に合成されたDNA又はRNAの混合物;並びにDNA及び/又はRNAが液体媒体中に存在する又は存在可能である任意の他の供給源を挙げることができる。ここで図を見ると、図1は固形媒体上に保存された生物学的試料例として組織、細胞、ウイルス、バクテリオファージ又は核酸を含有する任意の他の試料から遺伝材料例としてDNAを抽出する方法10という実施形態を説明するフローチャートである。生物学的試料を固形媒体にアプライする前に生物学的試料の加工ブロック12を行ってもよい。例えば、以下により詳細に述べられるある実施形態では、細胞又は組織を包含する生物学的試料は固定されてもよい例としてホルマリン中で。固定された組織又は細胞の加工としては、固定された細胞若しくは組織の再水和、細胞若しくは組織の溶解例としてプロテアーゼを使用して及び/又は遺伝材料例としてDNAとタンパク質との間の脱架橋を挙げることができる。ある実施形態では、脱架橋などのいくつかの加工は、固定された細胞又は組織を固形媒体にアプライした後に行ってもよい。所望の生物学的試料の固形媒体へのアプライを次いで行うブロック14。1つの実施形態では、固形媒体は化学処理された吸収性のセルロース系材料を包含する。例えば、固形媒体としてはWhatman登録商標FTA登録商標、又はFTA登録商標Elute紙GEHealthcareを挙げることができる。固形媒体は生物学的試料例として組織又は細胞を溶解する及び/又は固形媒体上で遺伝材料を保持する化学物質を包含する。実際に、固形媒体及び化学物質の組成は、DrySolidMediumforStorageandAnalysisofGeneticMaterialと題された米国特許第5976572号及びSolidMediumandMethodforDNAStorageと題された米国特許第5985327号公報においてより詳細に述べられたようなものであることができ、これら両者は全ての目的のためにその全体が参照により本明細書に組み込まれる。例えば、固形媒体としては弱塩基例としてトリス-ヒドロキシメチルメタントリス、キレート剤例としてエチレンジアミンテトラ酢酸EDTA、アニオン性の界面活性剤若しくは洗浄剤例としてドデシル硫酸ナトリウムSDS及び/又は尿酸若しくは尿酸塩を挙げることができる。固形媒体にアプライされると、化学物質が生物学的試料を溶解し、タンパク質を変性させる。加えて、化学物質はヌクレアーゼ及び病原体を不活性化させ、遺伝材料の保持及び長期保存を可能にする。アプライの後、アプライされた試料中のあらゆる液体を蒸発させる。固形媒体上の試料の乾燥ブロック16はアプライの後に行う。例えば、試料を含有する固形媒体はデシケーター中で一晩乾燥させてもよい。ある実施形態では、試料を含有する固形媒体は、遺伝材料をさらに保持するために保護材料例としてプラスチックケースの中に入れてもよい。所望の乾燥試料を含有する固形媒体を獲得したら、試料を含有する固形媒体の一部を、この一部から遺伝材料例としてDNAを電気溶出するために取り出すブロック18。ある実施形態では、試料全体を用いてもよい。電気溶出の前に、生物学的試料を含有する固形媒体の一部を、化学物質を除去するためにすすいでもよいブロック20。ある実施形態では、試料を含有する固形媒体の一部のすすぎとしては、固形媒体の一部をバッファー溶液中に浸漬させること又はバッファーを固形媒体の一部の中を通して若しくは固形媒体の一部を横切らせて流すことが挙げられる。ある実施形態では、バッファー溶液としてはトリス及びEDTAを少なくとも包含する例としてT.E.アルカリバッファー溶液例としてpH8.0が挙げられる。例えば、試料を有する固形媒体の一部は、アルカリバッファー溶液中に一定の時間例として5分間で1回以上浸漬させてもよい。いくつかの実施形態では、バッファー溶液としてGEHealthcareからのWhatman登録商標FTA登録商標精製試薬が挙げられる。例えば、試料を有する固形媒体の一部は、FTA登録商標精製試薬中に一定の時間例として5分間で1回以上浸漬させてもよい。他の実施形態では、アルカリバッファー溶液及びFTA登録商標精製試薬の両方を、試料を含有する固形媒体の一部をすすぐために用いてもよい。例えば、試料を含有する固形媒体の一部は、アルカリバッファー溶液中に一定の時間例として各浸漬で5分で2回及びFTA登録商標精製試薬中に一定の時間例として各浸漬で5分で2回浸漬させてもよい。代替的な実施形態では、試料を含有する固形媒体の一部のすすぎとしては、固形媒体の一部を水中に浸漬させること又は水を固形媒体の一部の中を通して若しくは固形媒体の一部を横切らせて流すことが挙げられる。例えば、試料を有する固形媒体の一部は、水中に一定の時間例として5分間で1回以上浸漬させてもよい。電気溶出のある実行例として透析チューブ中での電気溶出において、試料を含有する固形媒体のすすぎは必要でないこともあり得る。また、遺伝材料を、試料を含有する固形媒体の一部から電気溶出する前に、非DNAの汚染物質例としてタンパク質、脂質、炭水化物などを低減又は排除するために、試料を有する固形媒体の一部を酵素で処理してもよいブロック22。例えば、酵素溶液はプロテアーゼ、リパーゼ及び/又はグリコシド加水分解酵素などの加水分解酵素を包含することができる。さらに、遺伝材料を、試料を含有する固形媒体の一部から電気溶出する前に、遺伝材料例としてDNAを固形媒体上で適所に固定されている間に修復してもよいブロック24。固形媒体上に保存されたDNAなどの遺伝材料は、ニックすなわち、隣接ヌクレオチド間のホスホジエステル結合が欠如したもの又は脱塩基部位AP部位とも呼ばれる、すなわちホスホジエステルリボース骨格の完全性を維持しつつもヌクレオチド中のプリン又はピリミジン塩基が欠如したものを包含する可能性があるが、これらは予め加工された試料中の固定化剤例としてホルマリン又は他の手段によって導入されるものである。ある実施形態では、遺伝材料の修復としては、DNAポリメラーゼ例として大腸菌DNAポリメラーゼI及びDNAリガーゼ例としてT4DNAリガーゼ又は細菌のDNAリガーゼを少なくとも含有する溶液をアプライしてニック損傷を修復することが挙げられる。例えば、DNAポリメラーゼは、DNA修復の間のプルーフリーディングを仲介する3’→5’エキソヌクレアーゼ活性及びニックトランスレーションを仲介する5’→3’エキソヌクレアーゼ活性の両方に加え、DNAポリメラーゼ活性を包含する。DNAポリメラーゼはdNTPを必要とする。DNAリガーゼは、隣接ヌクレオチド間にホスホジエステル結合を形成する酵素活性を包含する。DNAリガーゼはrATP又はNADのいずれかを必要とする。試料を含有する固形媒体の一部を、DNA修復溶液と共に37°Cで30分間、次いで65°Cで20分間インキュベートしてもよい。他の実施形態では、DNA修復溶液は同様の又は異なるDNA修復機構を有する他のDNA修復酵素を包含してもよい。例えば、APエンドヌクレアーゼ例として大腸菌エンドヌクレアーゼIVを脱塩基部位の除去に用いることも可能である。脱塩基部位はAPエンドヌクレアーゼによって切断が可能で、3’水酸基末端及び5’デオキシリボースホスフェート末端が残される。この構造はDNAポリメラーゼ及びDNAリガーゼの組み合わせ作用によりその後に修復することが可能である。試料を含有する固形媒体を獲得した後、遺伝材料を固形媒体から次の媒体へと直接的に電気溶出するブロック26。ある実施形態では、試料を含有する固形媒体の一部を電気泳動ゲル例としてアガロースゲルのウェル中に直接的に配置し、ウェルをアガロースで封止し、遺伝材料を電気泳動ゲルの中に直接的に電気溶出してもよい図2及び図3。他の実施形態では、遺伝材料を溶液中に電気溶出してもよい。溶液中への電気溶出は種々の方法で行うことができる。例えば、D-tube商標透析装置MerckBiosciencesLtd.、透析カセット又は透析チューブ、Whatman登録商標Elutrap登録商標ElectroelutionSystemGEHealthcare又は他の装置を、遺伝材料を固形媒体から溶液へ直接的に電気溶出するのに用いることができる。さらなる実施形態では、遺伝材料は固形媒体から捕捉表面上に直接的に電気溶出してもよい。捕捉表面はブロッティングメンブラン例としてジエチルアミノエチルセルロースDEAE上にあり得る。電気溶出に続き、抽出された遺伝材料を分析することができるブロック28。試料を含有する固形媒体から抽出された遺伝材料は、最適には10キロベース以上のニックがほとんど存在しない高分子量DNAを包含する。実際、本アプローチによって抽出されたDNAは40キロベースに達することがある。特にDNA抽出は、上記の実施形態によれば、洗浄剤なしで行われる。固形媒体からのDNA抽出において洗浄剤を用いた場合、抽出されたDNAについてあらゆるその後の分析を行う前に、洗浄剤を除去するための付加的な段階が典型的に実施される。加えて、DNAを断片化する高温例として95°CでのDNAの抽出は上記の実施形態では回避される。従って、最小限の断片化を有する高分子量DNAが最小の作業で分析に利用可能となる。抽出されたDNAは、ポリメラーゼ連鎖反応PCR、単一ヌクレオチド多型分析、リアルタイムPCR及び他の下流のDNAの使用を包含する種々の分析において用いることができる。図2及び図3は、試料を含有する固形媒体から電気泳動ゲル中へのDNAの直接的な電気溶出の例を説明する。図2はSYBR登録商標GoldInvitrogenで染色された、パルスフィールドゲル電気泳動を用いて固形媒体から電気溶出されたDNAの電気泳動ゲルを描写する。電気泳動は1アガロースゲル、0.5×TE、pH8.0中で18時間、6V/cmで、スイッチ角度120°及びスイッチ時間50~90秒を用いて行われた。20μLのJurkat細胞2×106細胞/mLで懸濁を上述のようにWhatman登録商標FTA登録商標又はFTA登録商標Elute紙のいずれかにアプライして乾燥させた。乾燥したJurkat細胞試料の一部をFTA登録商標又はFTA登録商標Elute紙から取り出し、以下に指し示される種々の方法に従って洗浄した。加えて、ロードする前に、試料のいくつかを95°Cの水中に溶出した。Jurkat細胞試料を包含する湿った紙の一部を電気泳動ゲルのウェル中に直接置き、アガロースで封止した。図2中に示される電気泳動ゲル中に電気溶出された試料は次のとおりである。レーン1:サッカロマイセスセレビシエSaccharomycescerevisiae染色体DNAのサイズマーカーBioRad、レーン3:TE、pH8.0中に5分間浸漬させたFTA登録商標紙、レーン5:FTA登録商標精製試薬中に5分間2回浸漬させ、TEバッファー、pH8.0中に5分間2回浸漬させたFTA登録商標紙、レーン7:水中に5分間浸漬させたFTA登録商標Elute紙、レーン9:水中に5分間浸漬させ、次いで15秒間ボルテックスしたFTA登録商標Elute紙、レーン11:水中に5分間浸漬させ、次いで95°Cの水中で25分間溶出させたFTA登録商標Elute紙、レーン12:水中に5分間浸漬させ、次いで95°Cの水中で25分間溶出させ、60秒間ボルテックスしたFTA登録商標Elute紙、及びレーン14:サッカロマイセスセレビシエ染色体DNAのサイズマーカーBioRad。パルスフィールドゲル電気泳動の後、DNAをSYBR登録商標Goldで染色し、ゲルをTyphoon商標Imager蛍光スキャナー上で撮像した。図2中の結果は、Jurkat細胞試料からの高分子量DNAの、固形媒体すなわちFTA登録商標又はFTA登録商標Elute紙から電気泳動ゲルの中への直接的な電気溶出を実証する。電気溶出されたDNAは225キロベース未満であるが、約40キロベースであると推測される。図2はまた、高温条件下例として95°CでDNAを溶出しようと試みた場合の高分子量DNAの欠如を実証する。従って、高分子量DNAを固形媒体から直接的に電気泳動ゲルの中に電気溶出するためには、バッファー溶液例としてTEバッファー又はFTA登録商標精製試薬中又は水中での単純なすすぎのみが必要である。図3はアルカリゲル電気泳動を用いた同様の結果を説明する。図3はSYBR登録商標Goldで染色された、アルカリ標準ゲル電気泳動を用いて固形媒体から電気溶出されたDNAの電気泳動ゲルを描写する。電気泳動は1アガロースゲル、30mMNaOH、1mMEDTA中で2時間、150mAで行われた。電気泳動の間、ゲル外への拡散を防止するために、ゲルをガラスプレートで覆った。上記のように、20μLのJurkat細胞2×106細胞/mLで懸濁を上述のようにWhatman登録商標FTA登録商標紙にアプライして乾燥させた。乾燥したJurkat細胞試料の一部をFTA登録商標紙から取り出し、以下に指し示される種々の方法に従って洗浄した。Jurkat細胞試料を包含する湿った紙の一部を電気泳動ゲルのウェル中に直接置き、アガロースで封止した。図3中に示される、レーン1~8を有する電気泳動ゲル中に電気溶出された試料は次のとおりである。レーン1:TE、pH8.0中に5分間浸漬させたFTA登録商標紙、レーン3:FTA登録商標精製試薬中に5分間2回浸漬させ、TEバッファー、pH8.0中に5分間2回浸漬させたFTA登録商標紙、レーン5:精製ヒトDNA男性、AppliedBiosystems、及びレーン7:1kbラダーNewEnglandBiolabs。電気泳動の後、ゲルを1Mトリス-HCLpH=7.7及び1.5MNaClを含有する溶液中で30分間中和した。DNAをSYBR登録商標Goldで染色し、ゲルをTyphoon商標Imager蛍光スキャナー上で撮像した。図3中の結果もまた、Jurkat細胞試料からの高分子量DNAの、固形媒体すなわちFTA登録商標又はFTA登録商標Elute紙から電気泳動ゲルの中への直接的な電気溶出を実証する。電気溶出されたDNAは10キロベースより大きいものであった。従って、上記のように、高分子量DNAを固形媒体から直接的に電気泳動ゲルの中に電気溶出するためには、バッファー溶液例としてTEバッファー又はFTA登録商標精製試薬中又は水中での単純なすすぎのみが必要である。大きなDNAはまたアルカリゲル上にも存在するという事実は、電気溶出されたDNAがニックをほとんど含有しないことを指し示す。アルカリゲル中のDNAは一本鎖であるので、骨格中のあらゆるニックはDNA断片をもたらす。上で論じられたように、固形媒体からのDNAの直接的な電気溶出は固定された細胞又は組織にも適合する。図4は、固形媒体上に保存された固定化組織試料から遺伝材料例としてDNAを抽出する方法30を説明するフローチャートである。方法30は固定化組織試料の観点から考察されるものであるが、固定化試料はまた固定された細胞例として組織又は培養細胞株に由来するを包含してもよい。まず、供給源例としてマウス又はヒトから組織を収集するブロック32。組織の収集に続いて、組織試料をホルマリン、パラホルムアルデヒド又は他の固定化剤などの固定化剤を使用して、当技術分野で公知の方法に従って固定するブロック34。固定の間、遺伝材料例としてDNAはタンパク質と架橋を形成する。固定化組織試料のパラフィン中への包埋などのある実施形態では、固定化組織試料をエタノールの濃度を連続的に増加させた一連のエタノール洗浄で脱水することができるブロック36。脱水された試料を次いでキシレン中で洗浄し、パラフィン中に包埋してもよい。所望の固定化組織試料を獲得した後、試料が予め脱水された場合は、次いで試料を、濃度を連続的に減少させた一連のエタノール洗浄で再水和するブロック38。例えば、固定化組織試料を100エタノール、75エタノール、50エタノール、25エタノール及び蒸留水又はT.E.中で各々5分間、連続的に再水和する。固定化組織試料の再水和に続いて、再水和試料を1Mのカリウムチオシアネート中で一晩インキュベートしてもよい。固定化組織試料は、再水和されてもされなくても、固形媒体へのアプライの前に例としてプロテアーゼを使用して溶解することができるブロック40。例えば、固定化組織試料をプロテイナーゼK0.5mg/mL、pH7.4の50mMトリス、10mMEDTA、0.5SDS及び50mMNaClを包含する消化バッファー溶液中で55°C、3時間以上溶解することができる。ある実施形態では、固定化組織試料を上述のように固形媒体上に存在する化学物質を介して溶解してもよい。所望の固定化組織試料の少なくとも一部の固形媒体へのアプライを次いで行うブロック42。固定化組織試料は、媒体に対して試料を擦る、媒体に対して試料を押し当てるなどといった方法によって固形媒体にアプライされる。固形媒体は上述のようなものである。固形媒体は固形媒体上で遺伝材料を保持する化学物質を包含する。ある実施形態では、試料をアプライした後に固定化組織の溶解が望まれる場合、固形媒体は上述のような固定化組織試料を溶解する化学物質を包含する。アプライの後、アプライされた組織試料中のあらゆる液体を蒸発させる。固形媒体上の試料の乾燥ブロック44はアプライの後に行う。例えば、試料を含有する固形媒体はデシケーター中で一晩乾燥させてもよい。ある実施形態では、試料を含有する固形媒体は、遺伝材料をさらに保持するために保護材料例としてプラスチックフィルムの中に入れてもよい。所望の乾燥した固定化組織試料を含有する固形媒体を獲得したら、試料を含有する固形媒体の一部を、この一部から遺伝材料例としてDNAを電気溶出するために取り出す。ある実施形態では、試料全体を用いてもよい。電気溶出の前に、試料を含有する固形媒体の一部を、化学物質を除去するためにすすいでもよいブロック46。ある実施形態では、試料を含有する固形媒体の一部のすすぎとしては、固形媒体の一部をバッファー溶液中に浸漬させることが挙げられる。上述のように、バッファー溶液としてはアルカリバッファー溶液例としてTE又はFTA登録商標精製試薬を挙げることができる。例えば、試料を含有する固形媒体の一部は、FTA登録商標精製試薬中に一定の時間例として各浸漬で5分間で2回浸漬させ、アルカリバッファー溶液中に一定の時間例として各浸漬で5分間で2回浸漬させてもよい。しかしながら、ある実施形態では、上述のようにアルカリバッファー溶液中でのみ、FTA登録商標精製試薬中でのみ、又は水中でのみすすぎを行ってもよい。先に言及したように、電気溶出のある実施形態例として透析チューブ中での電気溶出において、試料を含有する固形媒体のすすぎは必要でないこともあり得る。上で言及したように、遺伝材料を、試料を含有する固形媒体の一部から電気溶出する前に、非DNAの汚染物質例としてタンパク質、脂質、炭水化物などを低減又は排除するために、固定化試料を有する固形媒体の一部を酵素で処理してもよいブロック48。例えば、酵素溶液はプロテアーゼ、リパーゼ及び/又はグリコシド加水分解酵素などの加水分解酵素を包含することができる。加えて、電気溶出の前に、固定化組織試料を固形媒体にアプライした後で遺伝材料とタンパク質との間を脱架橋してもよいブロック50。例えば、一級アミン例としてビシン、pH8.5又は他の求核試薬を包含する、pHが7.0より高い好ましくはpH7.5~10の間の架橋修復バッファー。脱架橋のため、試料を含有する固形媒体の一部を架橋修復バッファー中でインキュベートする例として65°Cで20時間。一級アミン又は求核試薬は、元々遺伝材料及び/又はタンパク質の間の架橋を形成させたアルデヒドから生ずる架橋の一部と反応し、これらを脱架橋する。あるいは、スルフヒドリル試薬をアミンの代わりに用いることが可能であり、この試薬もアルデヒドに由来する架橋の一部と反応する。この反応は、pH7未満で実施される場合、アミン系の求核試薬よりもより速く進む。ある実施形態では、上で言及したように、脱架橋は固定化組織試料を固形媒体にアプライする前に行ってもよい。さらに、遺伝材料を、試料を含有する固形媒体の一部から電気溶出する前に、遺伝材料例としてDNAを上述のように固形媒体上で適所に固定されている間に修復してもよいブロック52。固定化組織試料を有する固形媒体の一部を獲得した後、10キロベース以上の高分子量DNAを得るため、上述のように遺伝材料を固形媒体から次の媒体へと直接的に電気溶出するブロック54。抽出された遺伝材料は次いで、図5中で実証されるように、種々の方法例としてPCRで分析することができるブロック56。図5は、上述のような脱架橋及びDNA修復に続いて固形媒体上でホルマリン固定された組織試料から抽出されたDNAの質を説明する。図5はSYBR登録商標Goldで染色された電気泳動ゲルを描写しており、これは垂直ポリアクリルアミドゲル電気泳動PAGEシステムを用いた、上述のようにホルマリン中で固定されWhatman登録商標FTA登録商標紙にアプライされたヒト前立腺試料から抽出されたDNAのマルチプレックスPCR増幅物についての電気泳動ゲルである。電気泳動は6TBEトリス-ホウ酸-EDTA-尿素ゲル及び1×TBE中で40分間、160Vで行われた。固定されたヒト前立腺試料は上述のように加工例として再水和又は溶解され、FTA登録商標紙にアプライされた。FTA登録商標紙上の試料は次いで脱架橋及び/又はDNA修復エンドヌクレアーゼIVEndoIVを使用する又は使用しないに供された。脱架橋及び/又はDNA修復の後、固形媒体を3セットのPCRプライマーを含有するPCR反応に直接的に添加した。プライマーの配列は次のとおりである。5’CTCACCCTGAAGTTCTCAGG3’プライマー1、5’CCTCAAGGGCACCTTTGCCA3’プライマー2、5’GTCTACCCTTGGACCCAG3’プライマー3及び5’GATGAAGTTGGTGGTGAGG3’プライマー4。PCRプライマーは、高分子量のヒトDNAが存在するならば78塩基対プライマー1及び2、218塩基対プライマー1及び3及び380塩基対プライマー1及び4の産物を生産するように設計されている。増幅条件は次のとおりであった。段階1:95°Cで7分間、段階215サイクル:95°Cで1分間、69°Cで1分間及び72°Cで1分間、段階315サイクル:95°Cで1分間、63°Cで1分間及び72°Cで1分間、段階4:72°Cで10分間、次いで段階5:4°C。図5中に示される試料は次のとおりである。レーン1:低分子量DNAラダーNewEnglandBiolabs、レーン3:精製ヒトDNA男性、AppliedBiosystems、レーン4:非DNA対照、レーン5:修復反応EndoIVなし処理された精製ヒトDNA、レーン6:修復反応EndoIVあり処理された精製ヒトDNA、レーン8:脱架橋及び修復反応EndoIVなしを伴った、FTA登録商標紙上のホルマリン固定化ヒト前立腺試料、レーン9:修復反応EndoIVありのみを伴った、FTA登録商標紙上のホルマリン固定化ヒト前立腺試料、レーン10:脱架橋及び修復反応EndoIVありを伴った、FTA登録商標紙上のホルマリン固定化ヒト前立腺試料、レーン11:修復反応EndoIVありのみを伴った、FTA登録商標紙上のホルマリン固定化ヒト前立腺試料、レーン12:脱架橋反応のみを伴った、FTA登録商標紙上のホルマリン固定化ヒト前立腺試料、レーン13:脱架橋及び修復反応を伴わない、FTA登録商標紙上のホルマリン固定化ヒト前立腺試料、及びレーン15:低分子量DNAラダー。PAGEゲル電気泳動の後、DNAをSYBR登録商標Goldで染色し、ゲルをTyphoon商標Imager蛍光スキャナー上で撮像した。図5中の結果は、FTA登録商標紙上の試料が上述のように脱架橋及びDNA修復のために処理されている場合、より高分子量のPCR産物218塩基対及び380塩基対の出現を実証するレーン10。全ての他の処理の組み合わせではこれらのより高分子量のPCR産物を産生できない。本実験におけるDNAはPCRの前にFTA登録商標紙から溶出されていないが、FTA登録商標紙上になお置かれている修復された試料をより高い分子量を標的とするPCR増幅のために用いることが可能な場合、この結果は、FTA登録商標紙からDNAを溶出する能力と組み合わせて、かかる試料に対して実施されるべきより広範囲のDNA調査実験を可能にするものと認識できる。図6及び図7は、FTA紙から電気溶出する前に固定された試料を再水和することの利益を説明する。図6及び図7は、SYBR登録商標Goldで染色された、非変性ゲル電気泳動を用いて固形媒体から電気溶出されたDNAの電気泳動ゲルを描写する。電気泳動は0.8アガロースTBEゲル中で、80分間、110ボルトで行われた。図6中に示される試料は次のとおりである。レーン1:1kbDNAラダーNewEnglandBiolabs、レーン2:FTA登録商標紙に直接的にアプライし、乾燥させて水中ですすぎ、電気溶出したホルマリン固定化ヒト前立腺試料の0.5mm切片、レーン3:FTA登録商標紙にアプライし、乾燥させて電気溶出した20μLのJurkat細胞2×106細胞/mLに懸濁、及びレーン4:精製ヒトDNA男性、AppliedBiosystems。図7中に示される電気溶出された試料は次のとおりである。レーン1:精製ヒトDNA男性、AppliedBiosystems、レーン2:FTA登録商標紙にアプライし、乾燥させた20μLのJurkat細胞2×106細胞/mLに懸濁、レーン3:上述のように再水和し、FTA登録商標紙にアプライし、乾燥させて水中ですすいだホルマリン固定化ヒト前立腺試料の約0.5mmの切片、及びレーン4:パラフィン塊から一連の削り片としてこすり落とし、次いで上述のように再水和し、FTA登録商標紙にアプライし、乾燥させて水中ですすいだホルマリン固定化ヒト前立腺試料の約0.5mmの切片。TBE-ゲル電気泳動の後に、DNAをSYBR登録商標Goldで染色し、ゲルをTyphoon商標Imager蛍光スキャナー上で撮像した。図6及び図7中の結果、特に図6のレーン2と図7のレーン3及び4との間の比較は、再水和加工が固定された試料からのDNA回収を助けることを明確に指し示す。固定及びパラフィン包埋のための調製において脱水された組織試料を再水和する段階を包含することは、電気溶出の際の固定化試料からの遺伝材料の収率を増加させる。図8は、FTA登録商標紙から電気溶出された固定化試料から得られるDNAの分子量に対するDNA修復の効果を説明する。図8は、SYBR登録商標Goldで染色された、非変性ゲル電気泳動を用いて固形媒体から電気溶出されたDNAの電気泳動ゲルを描写する。電気泳動は0.8アガロースTBEゲル中で、80分間、110ボルトで行われた。ホルマリン固定化ヒト肺ILS19279-A04からの試料を上述のようにFTA登録商標紙にアプライした。架橋を上述のようにある試料において100mMビシンpH9.5中で修復し、及び/又はDNA修復反応を使用して処理した。試料を異なる反応ステージで停止させた。図8中に示される試料は次のとおりである。レーン1:1kbDNAラダーNewEnglandBiolabs、レーン2:再水和すなわちエタノール及びT.E.洗浄後、レーン3:FTA登録商標精製試薬洗浄後、レーン4:プロテイナーゼK消化後、レーン5:65°Cで行われる脱架橋反応後、レーン6:室温で行われる脱架橋反応後、レーン7:DNA沈殿65°Cで行われる脱架橋反応後、レーン8:DNA沈殿室温で行われる脱架橋反応後、レーン9:DNA修復反応65°Cで行われる脱架橋反応後、及びレーン10:DNA修復反応室温で行われる脱架橋反応後。図8中の結果は、レーン9及び10における高分子量物質矢印で指示されるは、FTA登録商標紙にまだ付着しているDNAを修復するのにDNA修復反応が用いられた後にのみ出現することを実証する。DNAは、DNAがFTA登録商標紙からのDNA溶出に伴う力及び溶液中のDNAに適用される力を受ける前の、FTA登録商標紙にまだ付着している間に修復される。このことは、互いに比較的近くに、しかし反対側に配置されるニックを含有するDNA鎖が分離するのを防ぐ。これらの高度にニック及びギャップを有する鎖を修復することにより、これらの鎖が二本鎖切断になることが防止され、結果として得られる産物はより高分子量のDNAである。分子量の増加は、DNA修復反応がDNA中のニック及びギャップを修復可能であったことの証拠を提供する。開示された実施形態の技術的効果は、電気溶出によって遺伝材料例として10キロベース以上の高分子量DNAを直接的に固形媒体から抽出することを包含する。遺伝材料の抽出は洗浄剤なしで行われ、従ってあらゆるその後の遺伝材料分析の前の、洗浄剤を除去するのに必要な付加的な段階を排除する。また、遺伝材料の抽出は高温例として95°Cの使用を回避し、従って断片化が最小限であるDNAの抽出を可能にする。固形媒体からの直接的な電気溶出を介した遺伝材料の抽出は、固定された及び固定されていない試料の両方に適合する。さらに、遺伝材料は固形媒体上になおある間に加工することができる。例えば、遺伝材料を修復してもよく、及び/又は遺伝材料とタンパク質との間を固定化細胞内で脱架橋してもよい。従って、固形媒体は、遺伝材料の抽出及びユーザーの作業を最小限にする関連した加工例としてDNA修復のための単一のプラットフォームを提供する。この明細書は、ベストモードを包含する本発明を開示するため、またあらゆる当業者に本発明を実施可能にするためにも例を使用し、任意の装置又はシステムを作成すること及び使用すること並びに組み込まれたあらゆる方法を実施することを包含する。本発明の特許を受けることができる範囲は特許請求の範囲により定義され、当業者が想到する他の例を包含し得る。かかる他の例は、それらの例が特許請求の範囲の文言と異ならない構造的要素を持つ場合、又はそれらの例が特許請求の範囲の文言とは実質的に差のない均等な構造的要素を包含する場合、特許請求の範囲内であると意図される。