"試料中の標的RNA分子を検出するための方法であって、RTオリゴヌクレオチドおよび3伸長領域を含む逆転写産物を産生するために、RTオリゴヌクレオチドを使用して試料中に含まれる標的RNAを逆転写する段階であって、該RTオリゴヌクレオチドが、DNAポリメラーゼ伸長を遮断するように修飾されたかまたは修飾可能な1つまたは複数のヌクレオチドを含むステムループ部分、および、該標的RNAの下流部分に相補的である標的アニーリング部分を含み、該標的アニーリング部分が該ステムループ部分に対して3に位置する、段階;増幅産物を産生するために、i該逆転写産物の3伸長領域の下流部分にアニールする第1増幅プライマーおよびii該逆転写産物に対して相補的なDNA鎖の接続部分にアニールする第2増幅プライマーを使用して該逆転写産物を増幅する段階であって、該接続部分が、該逆転写産物中の該RTオリゴヌクレオチドの3部分および3伸長領域の5部分に対して相補的である領域を含む、段階;ならびに該増幅産物を検出する段階を含み、該ステムループ部分は、該逆転写段階のために使用される条件下でステムループ構造をとるが、該増幅のために使用される条件下ではステムループ構造をとらず、かつ、該ステムループ部分がDNAポリメラーゼ伸長を遮断するように修飾可能である1つまたは複数のヌクレオチドを含む場合、該増幅段階に先立ち該修飾可能なヌクレオチドを修飾する段階をさらに含む、方法。DNAポリメラーゼ伸長を遮断するように修飾されたかまたは修飾可能な前記1つまたは複数のヌクレオチドが前記ステムループ部分の前記ループ内に位置する、請求項1記載の方法。前記ステムループ部分が、DNAポリメラーゼ伸長を遮断するように修飾された1つまたは複数のヌクレオチドを含む、請求項1または2記載の方法。前記ステムループ部分の前記ループが、脂肪族炭素鎖を用いて修飾されたヌクレオチドを含む、請求項3記載の方法。前記ステムループ部分が、DNAポリメラーゼ伸長を遮断するように修飾可能な1つまたは複数のヌクレオチドを含み、前記方法が、前記増幅段階に先立ち前記修飾可能なヌクレオチドを修飾する段階をさらに含む、請求項1または2記載の方法。前記修飾可能なヌクレオチドがdUであり、前記修飾段階がウラシルDNAグリコシラーゼを用いた処理を含む、請求項5記載の方法。前記ステムループ部分の前記ループが1つまたは複数のリボヌクレオチドを含み、前記修飾段階がRNaseを用いた処理を含む、請求項5記載の方法。前記標的RNAがmiRNAである、請求項1~6のいずれか一項記載の方法。試料中の標的miRNA分子を検出するための方法であって、RTオリゴヌクレオチドおよび3伸長領域を含む逆転写産物を産生するために、RTオリゴヌクレオチドを使用して該試料中に含まれる該標的miRNAを逆転写する段階であって、該RTオリゴヌクレオチドが、1つのdUヌクレオチドを含むステムループ部分、および、該標的miRNAの下流部分に相補的である標的アニーリング部分を含み、該標的アニーリング部分が該ステムループ部分に対して3に位置する、段階;ウラシルDNAグリコシラーゼでの処理により該dUヌクレオチドを修飾する段階;増幅産物を産生するために、i該逆転写産物の該3伸長領域の下流部分にアニールする第1増幅プライマーおよびii該逆転写産物に対して相補的なDNA鎖の接続部分にアニールする第2増幅プライマーを使用して、該逆転写産物を増幅する段階であって、該接続部分が、該逆転写産物中の該RTオリゴヌクレオチドの3部分および該3伸長領域の5部分に相補的である領域を含む、段階;ならびに、該増幅産物を検出する段階を含み、該ステムループ部分は、該逆転写段階のために使用される条件下でステムループ構造をとるが、該増幅のために使用される条件下では該ステムループ構造をとらない、方法。第2増幅プライマーが、3末端ヌクレオチドとしてDNAにハイブリダイズした場合に熱安定性を示す1つのヌクレオチドを有する、請求項1~9のいずれか一項記載の方法。DNAにハイブリダイズしたときに熱安定性を示す前記ヌクレオチドが、N型フラノース立体構造内に固定される、請求項10記載の方法。前記逆転写産物にアニールした場合の第1増幅プライマーの3末端の位置と、DNA鎖にアニールした場合の第2増幅プライマーの3末端の位置との間の増幅産物の配列中での距離が4~5ヌクレオチドである、請求項1~11のいずれか一項記載の方法。前記RTオリゴヌクレオチドの前記標的アニーリング部分が5~15ヌクレオチド長である、請求項1~12のいずれか一項記載の方法。前記ステムループの前記ステム部分が4~6ヌクレオチド長であり、該ステムループの前記ループ部分が4~12ヌクレオチド長である、請求項1~13のいずれか一項記載の方法。第2増幅プライマーが、前記RTオリゴヌクレオチドの前記ステムループ部分の13~24ヌクレオチド、該RTオリゴヌクレオチドの前記標的アニーリング部分の5~15ヌクレオチド、および前記逆転写産物の3伸長領域の5末端の1~5ヌクレオチドに相補的な配列にアニールする、請求項1~14のいずれか一項記載の方法。第1増幅プライマーが12~27ヌクレオチド長である、請求項1~15のいずれか一項記載の方法。前記検出段階が、蛍光挿入色素を用いて検出することを含む、請求項1~16のいずれか一項記載の方法。前記蛍光挿入色素がSYBRGreenまたはEvaGreenである、請求項17記載の方法。詳細な説明現在、試料からのRNAの検出のための方法が提供されている。本方法は、任意のRNA種を検出するために使用され得、成熟miRNAを検出する際miRNAを含む細胞から直接検出することを含むに有用でありうる。本方法は、ステムループ二次構造を有するように設計されたRTオリゴヌクレオチドプライマーと、増幅反応における一対のヘミネステッド増幅プライマーとの増幅反応の間にDNAポリメラーゼを遮断するように修飾されたヌクレオチドと組み合わせた、RTPCR逆転写PCR増幅方法である。図1および2は、本方法の概要の概略図を示す;示されている各核酸分子の5および3末端が表示されている。図1は、逆転写反応を示し、図2は、増幅反応を示す。本方法の逆転写段階図1において、最初の反応混合物100は、逆転写される標的RNA102および逆転写反応のためのプライマーとして作用する逆転写RTオリゴヌクレオチド104を含む。RTオリゴヌクレオチド104は、ステムループ部分106および標的アニーリング部分108を有する。逆転写反応において使用される条件下例えば、約37°Cの反応温度で、図1に示されるように、ステムループ部106は、ステムループ構造を有するアニールされた立体構造をとる。ステムループ部分106は、DNAポリメラーゼ伸長を遮断するように修飾されたかまたは修飾可能な、1つまたは複数のヌクレオチド110を含む。逆転写反応A1において、標的アニーリング部分108は、標的RNA102の下流部分112にアニールし、次に、逆転写酵素により伸長され、RTオリゴヌクレオチド104および3伸長領域116を含む逆転写産物114を産生する。本方法の増幅段階図2において、最初の反応混合物200は、逆転写産物114、第1増幅プライマー202、および第2増幅プライマー204を含む。また、最初の反応混合物200は、逆転写反応から持ち越されたいくつかのRTオリゴヌクレオチド104も含み得、これはしたがって、プライマーとしても作用しうる。増幅反応において使用される条件下例えば、約50°Cまたはそれより高い反応温度で、図2に示されるように、ステムループ部分106は、ステムループ構造を有さない融解された立体構造をとる。増幅B1の第1ラウンドにおいて、逆転写産物114は鋳型として作用し、第1増幅プライマー202は、逆転写産物114の下流部分206に結合する。DNAポリメラーゼ酵素は、ヌクレオチド110に達するまで第1増幅プライマー202を伸長し、これはさらなる伸長を遮断し、したがって、逆転写産物に対して相補的であり、ヌクレオチド110に対する相補的な位置の近傍において3末端を有する相補的DNA鎖208を産生する。相補的DNA鎖208は、RTオリゴヌクレオチド104の3末端と3伸長領域116の5末端との接続により形成された逆転写産物114における接続部に対して相補的である領域を含む接続部分210を有する。増幅B2の第2ラウンドにおいて、第2増幅プライマー204は、接続部分210で相補的DNA鎖208にアニールし、相補的DNA鎖208は、DNAポリメラーゼ伸長のための鋳型として作用し、DNA鎖212を産生する。第2増幅プライマー204は、このように、相補鎖208の末端からネストされるため、DNA鎖212は、逆転写産物114の配列の部分を有するが、逆転写産物114よりも短い。増幅B3のその後のラウンドにおいて、第1増幅プライマー202および第2増幅プライマー204は、利用可能なDNA鋳型鎖にアニールする。第1増幅プライマー202がDNA鎖212にアニールする場合、形成される相補的DNA鎖208は相補的DNA鎖208よりも短い。DNA鎖212および相補的DNA鎖208は、このように、増幅産物214を形成する。いくつかのより長いDNA鎖例えば逆転写産物114および相補的DNA鎖208などが存在し、鋳型としての役割を果たすが、増幅反応が複数のラウンドを通じて進行するにつれて、より多くの増幅産物214が、ヌクレオチド110の包含に起因し、かつ第2増幅プライマー204のネスティングに起因して、産生される。方法のさらなる概略図を図3に示す。図4は、増幅反応の特異性に対するDNAポリメラーゼを遮断するための修飾ヌクレオチドの効果を表す。以前の多数の報告Chenetal2005;Raymondetal2005;ShiChiang2005;Duncanetal2006;VarkonyiGasicetal2007;SharbatiTehranietal2008;Yangetal2009において、リバース増幅プライマーが、RTオリゴヌクレオチド中の配列に直接アニールするように設計された。そのような方法において特異性を達成するために、固有のmiRNA特異的蛍光プローブが、非特異的アンプリコンから標的を判別するために必要とされるChenetal2005。いくつかのTaqMan系のアッセイの場合では、この特異性は、検出のために1つの共通のプローブを使用することにより、スループットの利便性のために損なわれた。対照的に、本明細書に記載する方法において、特異性の増大は、逆転写オリゴヌクレオチドプライマーの部分および逆転写産物の3伸長領域の部分にアニールするように設計されているヘミネステッドリバースPCRプライマーを設計することにより、達成され得る。定量的リアルタイムPCR方法とは対照的に、本明細書に記載する方法は、蛍光プローブの使用を必要としない。ヘミネステッドリバース増幅プライマーは、アッセイの特異性を高め、迅速なサーモサイクリング条件下で蛍光挿入色素例えばSYBRGreenIなどを使用してサブゼプトモル量という少量のmiRNAの定量を可能にしうるからである。したがって、一局面において、試料中の標的RNAを検出するための方法が提供される。本方法は、逆転写反応を含む。逆転写反応は、反応のためのプライマーとしてRTオリゴヌクレオチドを使用して、標的RNAを含む試料で実施される。認識されるように、RTオリゴヌクレオチドはこのように、鋳型として標的RNAを使用し、RTオリゴヌクレオチドを伸長して、逆転写産物の5末端にRTオリゴヌクレオチドおよび3末端に伸長領域を含む逆転写産物を形成する、逆転写酵素のためのプライマーとして働く。RTオリゴヌクレオチドは、ステムループ部分と、ステムループ部分に対して3に位置する標的アニーリング部分とを含む。したがって、逆転写反応において使用されるRTオリゴヌクレオチドは、ステムループ構造を含む5部分を有するように設計されたDNAオリゴヌクレオチドである。理解されるように、ステムループ構造は、一緒に対となって短い二重鎖DNAステムを形成する相補的な塩基配列を有する自己アニーリング構造である。ループは、ステムを形成する2つの相補的領域の間に介在するヌクレオチドにより形成され、かつ、ステムの1つの末端に一本鎖セクションを形成して、二本鎖ステムを形成する2つの部分を連結する。ステムループ部分は、逆転写反応のために使用される条件下でステムループ構造をとるように設計され、これは、バッファー、塩、および温度条件ならびにDNA二次構造に影響を及ぼしうる任意の他のパラメーターを含む条件下を意味しており、それらは反応において使用される逆転写酵素が逆転写を行うことを可能にするように選ばれる。ステムループ部分は、また、融解するか、あるいは、以下に考察する増幅反応のために使用される条件下でステムループ構造をとらないように設計される。したがって、ステム部分の配列を、関連するバッファー条件を考慮に入れることを含み逆転写のために使用される温度でアニールするように、かつまた関連するバッファー条件を考慮に入れることを含み増幅反応のために使用される温度ではアニールしないように、選択してもよい。例えば、ステムループ部分は、37°Cまたはそれ以下ではステムループ構造をとりうるが、約50°Cまたはそれ以上ではステムループ構造を形成するためにアニールしないことがありうる。RTオリゴヌクレオチドのステムループ部分は、DNAポリメラーゼ遮断位置を含む。DNAポリメラーゼ遮断位置とは、直鎖化しステムループ構造をとらない場合に逆転写産物を鋳型として使用し、増幅反応において増幅プライマーを伸長させる伸長DNAポリメラーゼに対する障害として働く、ステムループ領域中の位置である。DNA遮断位置は、RTオリゴヌクレオチドのステムループ部分内の任意の場所に配置されうる。一態様において、DNA遮断位置はステムループ部分のループ内に配置される。DNA遮断位置は、伸長DNAポリメラーゼによるプライマー伸長を遮断するステムループ領域に対する任意の修飾でありうる。例えばDNA遮断位置は、例えばDNAヌクレオチドの誘導体または付着化学基を有する修飾DNAヌクレオチドを使用した、DNAポリメラーゼが読むことのできない修飾ヌクレオチドでありうる。修飾とは、修飾ヌクレオチドの核酸塩基の構造変化でありうる;すなわち、それは、DNAポリメラーゼがテンプレートとして使用できないか、あるいは、後を伸長することができないA、G、C、またはTのアナログでありうる。修飾とは、DNA遮断位置のヌクレオチド上の置換基非ヌクレオチド基を含むである基でもよく、ペンダント基でありうるか、あるいは、基がオリゴヌクレオチド骨格の部分を形成するように2つのヌクレオチドに付着されうる。例えば、DNA遮断位置は、ループ領域中でもよく、2つのヌクレオチドを連結する脂肪族炭素鎖例えば、C6脂肪族鎖を含んでもよい。このように、修飾は、DNAポリメラーゼによる伸長を遮断するために、非ヌクレオチド基の組込み骨格内への組込みを含むを含みうる。いくつかの態様において、DNA遮断位置は、RTオリゴヌクレオチドが転写反応に加えられる場合、DNAポリメラーゼを遮断するように既に修飾されていてもよい。例えば、修飾ヌクレオチド2アミノ52デオキシbDリボフラノシルピリジン5三リン酸dCTPまたは52デオキシbDリボフラノシル3メチル2ピリドン5三リン酸dTTPを使用してもよい。両方の修飾ヌクレオチドは、Taqポリメラーゼにより触媒されるPCRにおいて強い阻害を示すことが実証されているGuoetal1998。他の態様において、DNA遮断位置は、DNAポリメラーゼを遮断するための処理時に修飾可能であるヌクレオチドまたは基でよい。すなわち、RT反応に加えた場合、修飾可能なヌクレオチドまたは基は、DNA遮断位置に修飾ヌクレオチドを形成するために、さらに処理される。例えば、一態様において、修飾可能なヌクレオチドはdUヌクレオチドであり、それはウラシルDNAグリコシラーゼUDGで処理される。別の態様において、修飾可能なヌクレオチドはリボヌクレオチドでよく、それはRNaseで処理される。両方の場合において、修飾処理は修飾ヌクレオチドRTオリゴヌクレオチドの切断を含むをもたらし、DNAポリメラーゼによる伸長を効果的に防止する。修飾可能なオリゴヌクレオチドの修飾は、増幅反応に先立って実施され、RT反応後に実施してもよい。ステムループ部分は、逆転写の間にステムループ構造を提供しかつ増幅反応の間に融解するための任意の適した長さでありうる。例えば、全ステムループ構造は、12~24ヌクレオチド長でありうる。いくつかの態様において、ステムループのステム部分は、4または6ヌクレオチド長でありうる。いくつかの態様において、ステムループのループ部分は、4~12ヌクレオチド長でありうる。ステムループ構造を形成するオリゴヌクレオチドの設計は公知であり、所与の配列についてのアニーリング温度を算出するか、またはある一定のアニーリング条件についてステムループ構造を設計するコンピュータプログラム例えば、MFOLDソフトウェアが利用可能である。上記のように、ステム部分の配列は、逆転写反応のために使用される温度ではアニールするが増幅反応のために使用される温度では融解するように設計してもよい。上記のように、RTオリゴヌクレオチドは、標的アニーリング部分を含む。標的アニーリング部分はステムループ部分に対して3に位置し、標的RNAの下流部分に対して相補的であるように設計される。いくつかの態様において、RTオリゴヌクレオチドの標的アニーリング部分は、5~15ヌクレオチド長である。このように、逆転写反応に続き、逆転写産物が産生され、逆転写産物は、RT産物の5末端にRTオリゴヌクレオチドを含み、かつ、RTオリゴヌクレオチドの標的アニーリング部分が相補性を有する領域の下流のまたはそれに対して3に位置する、標的RNAの下流部分に相補的であるRTオリゴヌクレオチドに対して3の伸長領域を含む。増幅反応は、逆転写試料で実施される。使用されるPCR方法は、当技術分野において公知のように、リアルタイムPCR法を含みうる。そのような方法は、産生される増幅産物を検出するための蛍光プローブの使用を含む。認識されるように、増幅反応は、増幅プライマー、フォワードプライマーおよびリバースプライマーのペアを使用して行う。第1増幅プライマー即ち、フォワードプライマーは、RT産物の3伸長領域の下流部分にアニールするように設計される。プライマーは、RT産物の3伸長領域の所望の部分にアニールするように任意の適した長さでありうる。プライマーの長さは、選ばれたアニーリング温度および条件により部分的に決定されうる。鋳型核酸内における所望の配列へのアニーリングのための増幅プライマーの設計が公知である。いくつかの態様において、第1増幅プライマーは、12~27ヌクレオチド長である。第2増幅プライマー即ち、リバースプライマーは、RT産物に相補的なDNA鎖の接続部分にアニールするように設計される。相補的DNA鎖の接続部分は、RT産物がRTオリゴヌクレオチドから3伸長部分に移行する箇所に対して相補的な領域を含む。このように、接続部分は、RTオリゴヌクレオチドの3部分およびRT産物中の3伸長領域の5部分に相補的である領域を含む。いくつかの態様において、第2増幅プライマーは、RTオリゴヌクレオチドのステムループ部分の13~24ヌクレオチド、RTオリゴヌクレオチドの標的アニーリング部分の5~15ヌクレオチド、および逆転写産物の3伸長領域の5末端の1~5ヌクレオチドに相補的な配列にアニールするように設計される。いくつかの態様において、第2増幅プライマーは13~24ヌクレオチド長である。RNAがmiRNAである場合を含むいくつかの態様において、逆転写産物にアニールした場合の第1増幅プライマーの3末端の位置とDNA鎖にアニールした場合の第2増幅プライマーの3末端の位置の間の増幅産物の配列における距離は、4~5ヌクレオチドであり、これは、第1増幅プライマーの3末端がRT産物にアニールする場所と第2増幅プライマーの3末端がRT産物に対して相補的であるDNA鎖にアニールする場所の間に1~4ヌクレオチドのオーバーラップがありうること、または、1~5ヌクレオチドのギャップがありうること、または、それぞれの鋳型核酸上にアニールした場合に増幅プライマーの3末端の間にアラインメントがありうることを意味している。増幅プライマーのいずれかまたは両方が、3末端ヌクレオチドとしてDNAにハイブリダイズした場合に熱安定性を呈するヌクレオチドを有しうる。そのような熱安定ヌクレオチドの包含は、高い融解温度の使用を可能にし、結果として、そのようなヌクレオチドを含まないDNAと比較して、DNAに対する増幅プライマーの優先的なアニーリングをもたらす。例えば、DNAにハイブリダイズした場合に熱安定性を呈するヌクレオチドは、N型フラノース立体構造内に固定されうる。増幅反応が実施され、増幅産物が得られる。増幅が生じたら、次にこれを検出する。増幅産物を検出する段階は、検出の任意の方法を含んでいてよく、例えば、増幅産物と、固定化した相補的配列を有するマイクロアレイをハイブリダイズさせること、技術、例えばゲル電気泳動などを使用してサイズ分離すること、および増幅産物を、それが産生されている時に検出するリアルタイムPCR方法を使用することを含む。検出段階は、蛍光挿入色素を用いて増幅産物を検出することを含みうる。例えば、蛍光挿入色素は、SYBRGreenまたはEvaGreenでありうる。方法の例示的な一態様において、試料中の標的miRNA分子を検出するための方法が提供され、該方法は、RTオリゴヌクレオチドおよび3伸長領域を含む逆転写産物を産生するために、RTオリゴヌクレオチドを使用して該標的miRNAを含む該試料を逆転写する段階であって、該RTオリゴヌクレオチドが、1つのdUヌクレオチドを含むステムループ部分、および、該標的miRNAの下流部分に相補的である標的アニーリング部分を含み、該標的アニーリング部分が該ステムループ部分に対して3に位置する、段階;ウラシルDNAグリコシラーゼでの処理により該dUヌクレオチドを修飾する段階;増幅産物を産生するために、i該逆転写産物の該3伸長領域の下流部分にアニールする第1増幅プライマーおよびii該逆転写産物に対して相補的なDNA鎖の接続部分にアニールする第2増幅プライマーを使用して、該逆転写産物を含む該試料を増幅する段階であって、該接続部分が、該逆転写産物中の該RTオリゴヌクレオチドの3部分および該3伸長領域の5部分に相補的である領域を含む、段階;ならびに、該増幅産物を検出する段階を含み、該ステムループ部分は、該逆転写段階のために使用される条件下でステムループ構造をとるが、該増幅のために使用される条件下では該ステムループ構造をとらない。本方法を、以下の非限定的な実施例によりさらに例示する。実施例1デオキシウリジン組込みオリゴヌクレオチドおよびヘミネステッドプライマーを使用したリアルタイムRTPCRによる成熟マイクロRNAの高性能定量。材料および方法成熟および前駆体miRNA鋳型ならびに配列分析。成熟miRNAを、ProligoSigmaStLouisMOUSAまたはIntegratedDNATechnologiesCoralvilleIAUSAにより合成した。T7プロモーター配列決定タグ付きPCRプライマーを使用し、前駆体miRNAをクローン化した表2。精製したPCR産物をシークエンシングにより検証し、製造者の指示に従って、前駆体miRNAのインビトロ転写用のMEGAscriptT7TranscriptionキットAmbionAustinTXUSAに付した。成熟miRNAおよび前駆体miRNAの両方を、分光光度法により定量し、所望の濃度に希釈して、標準として用いた。miRNAホモログの配列アラインメントおよび系統発生分析を、VectorNTIソフトウェアバージョン80InvitrogenCarlsbadCAUSAを使用して実施した。細胞培養および全RNA単離。ヒト神経膠芽腫細胞株A172およびU251を、37°Cの5CO2加湿インキュベーターにおいて、10ウシ胎児血清FBS、Sigmaおよび抗生物質100Umlペニシリンおよび100μgmlストレプトマイシンを補充したDMEM中で培養した。U251細胞を、24時間、6ウェルプレート中で、1ウェル当たり200,000個の細胞で播種し、12~16時間、FBSを含まないDMEM培地を用いてインキュベートした。細胞を、次に、DMEM中で定められた期間、100ngmlGDNFを用いて刺激した。MEK阻害剤試験のために、細胞を、GDNF刺激に先立ち、DMEM中で45分間、5μΜU0126PromegaMadisonWIUSAを用いてプレインキュベートした。未処理またはGDNF処理の神経膠芽腫細胞からの全RNAを、製造者の指示に従って、20μgml直鎖アクリルアミドAmbionの存在下でTRIzol試薬Invitrogenを使用して単離した。抽出したRNA試料を、次に、分光光度法を使用して定量し、完全性を変性RNAゲル電気泳動により調べた。逆転写RT。全RNA試料を、37°Cで30分間、RNaseを含まないDNaseIPromegaを用いて処理した。DNaseを80°Cで5分間、不活化した。一次および前駆体miRNAのRTについて、製造者Invitrogenにより特定されるように、DNaseI100ngで処理した全RNAまたはインビトロ転写した前駆体miRNA標準の希釈物を、最初に、150nMの遺伝子特異的リバースプライマーの存在下、80°Cで5分間、加熱し、氷上で急速凍結し、逆転写した[1×バッファー、dNTP10mM、ジチオスレイトールDTT、RNase阻害剤、Thermoscript15U]。逆転写を60°Cで45分間行い、さらに85°Cで5分間のさらなるインキュベーションにより終結させた。前駆体の検出のために、RTおよびリアルタイムPCRの両方を、以前報告されたように、事前検証された遺伝子特異的プライマーを用いて行ったJiangetal2005。成熟miRNAのRTについては、100ngのDNaseI処理した全RNAまたは合成ヒト成熟miRNA標準の希釈物を、42°Cで30分間、全容積10μl中で、100UのImpromIIPromegaおよび100nMのステムループまたは直鎖のいずれかのRTオリゴヌクレオチドを使用して逆転写した。反応を70°Cで5分間、加熱することにより終結させた。24種の成熟miRNAのマルチプレックスRTについては、DNaseI100ngで処理した全RNA試料を、42°Cで30分間、全容積40μl中で、400UのImpromIIおよび100nMの各RTオリゴヌクレオチド合計2.4μMを使用して逆転写した。cDNA試料を、次に、miRNA特異的プライマーを使用したリアルタイムPCRのために使用した。RTおよびリアルタイムPCRの両方のためのプライマーを表3に列挙した。直鎖RTオリゴヌクレオチドを表4に列挙した。ウラシルDNAグリコシラーゼUDG処理。デオキシウリジンdU組込みを伴うRTオリゴヌクレオチドを、IntegratedDNATechnologiesにより合成した。逆転写を、上記のように実施した。cDNA試料を、次に、37°Cで10分間、5UUDGNewEnglandBiolabsBeverleyMAUSAを用いて処理した。反応物を95°Cで10分間、不活化させ、リアルタイムPCRに付した。RNA単離を伴わないmiRNAの検出。種々の細胞密度細胞10~105個/ウェルでの96ウェルプレート中のU251細胞を、PBSを用いて1回洗浄し、溶解し、0.5TritonX100ThermoFisherScientificMAUSA、400UImpromIIPromega、および100nMの各RTオリゴヌクレオチド合計2.4μMを含む40μlのRT混合物を用いて、RNase阻害剤SUPERaseIn1Uμl、Ambionの存在下または非存在下で、42°Cで30分間、ウェル中で直接逆転写した。比較のために、同一の密度の細胞から全RNAを単離し、同じRT混合物中で逆転写した。cDNA試料を、次に、リアルタイムPCRのために使用した。リアルタイムPCR。リアルタイムPCRを、SYBRGreenIを使用して、CFX96システムBioRadHerculesCAUSAで実施した。前駆体miRNAおよびU6snRNAのリアルタイムPCRを、以前の報告Schmittgenetal2004;Jiangetal2005に従って実施した。miRNAcDNAの高速サーモサイクリングを95°Cでの10分間の最初の変性後に実施し、95°Cで5秒の変性および60°Cで5秒のアニーリング/伸長の50サイクルが続いた。各cDNA試料1μlを、25mMMgCl2、100mMの各プライマー、および125UKlearTaqDNAポリメラーゼKBiosciencesHoddesdonUKを含む全容積25μlの1×XtensaMixSG商標BioWORKSSingapore中でのリアルタイムPCRに付した。サイクル閾値Ctを、CFXマネージャーソフトウェアBioRadを使用して自動的に算出した。適用可能な場合、全てのmiRNA発現レベルを、U6snRNA発現に対して標準化した。リアルタイムRTPCRアッセイの効率および特異性の算出。リアルタイムRTPCRの効率および特異性を、以前記載されたように決定したToo2003。簡潔に示すと、miRNAの10倍希釈物をリアルタイムRTPCRに付した。miRNAの標準曲線を、合成miRNA希釈物のCt対Logをプロットすることにより得た。アッセイの効率を101S1×100により算出し、式中、Sは標準曲線の傾きであった。特異性の算出については、完全にマッチしたmiRNAおよびミスマッチしたmiRNAの同一量RT当たり109コピーをリアルタイムRTPCRにより定量した。ΔCtを、次に、Ct完全にマッチしたmiRNACtミスマッチしたmiRNAとして算出した。ミスマッチしたmiRNAの相対検出を、次に、10ΔCtS×100により算出した。結果ヘミネステッドリアルタイムRTPCRアッセイの概要。本試験において、本発明者らは、ヘミネステッドリアルタイムRTPCRによる成熟miRNAの特異的な検出のための簡単な方法を設計した図5。最初に、本発明者らは、多数の以前の報告Chenetal2005;Raymondetal2005;ShiChiang2005;Duncanetal2006;VarkonyiGasicetal2007;SharbatiTehranietal2008;Yangetal2009において、リバースPCRプライマーが、RTオリゴヌクレオチド中の配列に直接アニールするように設計されたことに注目した。特異性を達成するために、固有のmiRNA特異的蛍光プローブが、非特異的アンプリコンから標的を判別するために必要とされるChenetal2005。いくつかのTaqMan系アッセイの場合では、この特異性は、検出のために1つの共通のプローブを使用することにより、スループットの利便性のために損なわれた。本発明者らは、増大した特異性を、一般のまたは汎用のリバースPCRプライマーを使用する代わりに、ヘミネステッドリバースPCRプライマーを設計することにより達成することができるという仮説を立てた。図6は、二本鎖鋳型上の各プライマーの3末端の間の異なる距離を伴う、この方法におけるフォワードおよびリバースプライマーの設計を実証する。図7は、4ヌクレオチドのより小さなループが12ヌクレオチドのより大きなループと同様に効果的であることを示す。この仮説をテストするために、成熟miRNAを、最初に、RTの間に安定したステムループ二次構造をとるRTオリゴヌクレオチドにより42°Cで逆転写した。cDNA試料を、次に、タグ付きフォワードプライマーPfおよびヘミネステッドリバースプライマーPrを使用して増幅し、ここで3~5ヌクレオチドがRTオリゴヌクレオチドを越えて伸長する。cDNA試料の増幅を、SYBRGreenIを使用したリアルタイムPCRにおいてモニターした。RTオリゴヌクレオチドはデオキシウリジンdU残基を組込むことができ、生成されたcDNAを、その後、増幅前に37°CでウラシルDNAグリコシラーゼUDGを用いて処理した。任意のリアルタイムRTPCRアッセイのユーザーが定める設計を補助するために、フローチャートを、例としてhsamiR21以下、miR21を使用することにおいて示した図8。ヘミネステッドリアルタイムRTPCRアッセイの性能。ヘミネステッドリアルタイムPCRアッセイの性能を、最初に、高速1サイクル当たり10秒および標準15秒の変性および60秒アニーリング/伸長を伴う1サイクル当たり75秒の両方のサーモサイクリングプロファイルの下でmiR21cDNA希釈物を使用して評価した。アッセイは、両方のサイクリングプロファイルの下で優れたダイナミックレンジおよび直線性を示し図9A、B、miRNAの迅速な検出のためのこのアッセイの頑健性を実証した。RTおよびPCRの両方の性能を評価するために、合成miR21を、7桁を上回り希釈しRT当たり109~100コピー、ヘミネステッドリアルタイムRTPCRにより定量した。標準曲線の優れた直線性は、miR21アッセイが少なくとも7Logの広いダイナミックレンジを有し、RT反応当たり100コピーサブゼプトモルという少数を検出することができることを示唆した図9C、D。本発明者らは、次に、全RNA試料からmiRNAを検出することにおいて、このアッセイの性能を検討した。100ng~1pgの全RNA希釈物図9E、Fおよび細胞100,000~10個から単離した全RNA図9G、Hを、miR21ヘミネステッドリアルタイムRTPCRアッセイを使用して定量した。標準曲線は再び優れた直線性を示し図9F、H、このアッセイが微量1pgの全RNAからまたは10個という少数の細胞からmiRNAを確かに検出することが可能であることを示唆した。RNA分画を伴わずに全RNAから成熟miRNAを定量することにおけるこのアッセイの能力は、全RNAスパイクイン実験によりさらに支持された。ここでは、let7dおよびlet7eを含まないデータ示さずU251細胞からの100ngの全RNAを、変動量の合成let7dまたはlet7emiRNAを用いてスパイクした。全RNAの存在は、成熟let7dlet7emiRNAの定量に影響を及ぼさなかった図10。3つの他のmiRNAmiR24、miR92、およびmiR218についてのヘミネステッドリアルタイムRTPCRアッセイも評価した図12。3つのアッセイの全てが、優れたダイナミックレンジ少なくとも7Log、感度RT当たり103~104コピー、およびRTPCR効率88~100を示した。さらに、これらのアッセイは、合成標準および全RNA試料の両方からの標的miRNAの特異的な増幅を示した。アンプリコンのサイズを、ゲル電気泳動により確認した図14。前駆体miRNAに対する成熟の特異的な検出。前駆体miRNAに対して成熟miRNAを判別する際のヘミネステッドリアルタイムRTPCRアッセイの能力を、9つの成熟miRNAおよびそれらの対応する前駆体miR21、miR71、miR72、miR2181、miR2182、let7f1、let7f2、let7g、let7iを使用して調べた。比較のために、本発明者らは、RTΔG≧05kcalmolの間に好ましい二次ステムループ構造を形成しない直鎖RTオリゴヌクレオチドも評価した。より良い比較のために、これらのステムループRTオリゴヌクレオチドおよびそれらの対応する直鎖RTオリゴヌクレオチドを、15末端で4~5塩基だけ異なり;2同一のGC含量および類似のTm1°C差を有し、かつ、3同じプライマーをPCRに使用することができるように同一の3配列を有するように、設計した。成熟miRNAおよびプレmiRNAの同じ量1RT当たり109コピーを、ステムループまたは直鎖のいずれかのRTおよびヘミネステッドリアルタイムPCRを使用して個々に定量した。検討した9つのプレmiRNAに依存して、成熟miRNAを、ステムループRTオリゴヌクレオチドを使用して、プレmiRNAよりも3~14サイクル8.7サイクルの平均ΔCt早く検出した。対照的に、直鎖RTオリゴヌクレオチドを使用したアッセイは、それほど判別可能ではなく48サイクルの平均ΔCt、いくつかの成熟miRNAを、それらの前駆体例えばプレmiR21、プレlet7f1、およびプレlet7iから判別できなかった表1。ヒトlet7miRNAホモログの判別。いくつかのmiRNAファミリー例、hsalet7、hsamiR30は、単一または少数のヌクレオチドだけ異なる高度に相同なmiRNAから成る。8つのlet7ファミリーmiRNAは、63.6までの全体的な配列同一性を共有し、その間で、let7aとlet7c、let7aとlet7f、let7bとlet7fは単一ヌクレオチドだけ異なる表11A。本試験において、各let7miRNAについてのヘミネステッドリアルタイムRTPCRアッセイを設計した。各アッセイを使用して、8つの全ての合成let7miRNAを増幅し、相対検出を比較した。簡潔に示すと、各let7miRNAの特異的な逆転写RT当たり109コピーを、最初に、相同性の低い3領域を標的とするステムループRTオリゴヌクレオチドを使用して達成した。let7miRNAの判別を、miRNA特異的フォワードPCRプライマーおよび好ましくはmiRNA特異的3末端配列を伴うヘミネステッドリバースプライマーによりさらに改善させた。8つのlet7アッセイの全てが、let7cに対して1778の相対検出を伴うlet7aアッセイを除き、1未満の非特異検出を伴い、相同miRNAに対して優れた判別を示した図11B。2ヌクレオチドまたはそれ以上だけ異なるlet7miRNAについて、これらのアッセイは、03未満の交差標的増幅を伴い、標的miRNAを特異的に検出することができた。この結果は、ヘミネステッドリアルタイムRTPCRアッセイが、安価なSYBRGreenI検出化学を用いて、蛍光プローブ系のリアルタイムRTPCRアッセイChenetal2005と同程度のレベルで高度に相同なmiRNAを判別することが可能であることを示唆する。dU組込みRTオリゴヌクレオチドおよびUDG処理による改善されたアッセイ性能。ある一定の高度に相同なmiRNAの間の判別を、ウラシルDNAグリコシラーゼUDG処理を含む新規戦略を使用してさらに改善することができる。この試験において、本発明者らは、キャリーオーバーされたRTオリゴヌクレオチドの量が、PCRの間に増幅プライマーとして働くことができることを観察したが、効率はより劣っていた図16。興味深いことに、UDGを用いた処理後、dU組込みRTdURTオリゴヌクレオチド標準的RTdTRTオリゴヌクレオチドではないはリバースPCRプライマーとして働くことができなかった図16B、C。本発明者らは、次に、let7miRNAホモログ間の判別が同様の戦略を用いてさらに改善されうるという仮説を立てた。実際に、let7aについての標準的dTRTオリゴヌクレオチドが、let7fmiRNAに対して003の相対検出を示し、ループdU1またはステムdU2のいずれかの領域でdU組込みを伴うlet7aRTオリゴヌクレオチドは、UDGで処理した後にlet7fを交差増幅する能力が有意に低かった図13。let7adTおよびdURTオリゴヌクレオチドの両方が、let7aの逆転写を等しく良好にプライミングすることができたデータは示さず。U251細胞におけるGDNF誘導性miRNA発現を同定するためのマルチプレックスアッセイの適用。このmiRNA検出方法の頑健性を評価するために、ヘミネステッドリアルタイムRTPCRアッセイを設計し、U251細胞におけるGDNF調節miRNAを同定するために適用した。ヒト神経膠芽腫において異常調節されていることが報告された18種のmiRNAmiR7、10b、15b、21、124、128、137、139、146b、181a、181b、181c、218、221、222、425、451、486Pangetal2009および8つのlet7ファミリーmiRNAを含む合計26種のmiRNAを検討した。20種のmiRNAmiR137、146b、181c、451、let7d、およびlet7eを除くがU251細胞において発現されることが見出されたデータは示さず。GDNFを用いた細胞の刺激は、ERK12MAPKの時間依存的活性化を誘導し、それはMEK阻害剤U0126の前処理により阻害された図18。本発明者らは、次に、GDNFによるU251細胞におけるこれら20種のmiRNAの発現の経時的調節を定量した。興味深いことに、GDNF刺激は、miR7、21、218図15Aおよびlet7f、7g、7i図15Bの時間依存的な上方調節を誘導した。他のmiRNAの有意な調節は観察されなかった。本発明者らは、次に、26種のmiRNA24種のRTオリゴヌクレオチドに対応するの同時逆転写およびヘミネステッドリアルタイムPCRによる個々のmiRNAのその後の検出のためのマルチプレックスアッセイを開発した。この24プレックスアッセイを使用して、本発明者らは、GDNFによる6つのmiRNAの上方調節が、U0126を用いた細胞の前処理により効果的に阻害されることを見出し、MEKERK12シグナル伝達経路がGDNF誘導miRNA発現のために要求されることを示唆する図17。同様の結果が、例としてmiR218およびlet7iを使用した標準的シングルプレックスアッセイにより得られた図20。細胞溶解物におけるmiRNAの直接およびマルチプレックス検出。細胞溶解物からmiRNAの直接検出は、時間のかかる多段階RNA単離プロセスを回避し、アッセイのスループットを劇的に増加させることができる。本発明者らは、96ウェル中の10~100,000個の培養U251細胞からのmiRNAの直接およびマルチプレックス定量におけるヘミネステッドリアルタイムRTPCRアッセイの能力をさらに調べた。これらの細胞からの単離全RNAを定量のための対照として使用した。図9Hと同様に、単離したRNA対照のmiR21およびmiR222標準曲線の優れた直線性は、miRNAが、10個という少数の細胞から抽出された全RNAから確実に定量することができることを示唆した図19。miR21およびmiR222の両方を、単離したRNA対照と比較したように、このマルチプレックスアッセイを使用して10~1000個の細胞の溶解物から等しく良好に検出することができることは重要である。しかし、miRNAの直接定量が、コンフルエントに近い細胞104個/ウェルまたはコンフルエントを上回る細胞密度細胞105個/ウェルからの溶解物で損なわれたことは注目するに値する。興味深いことに、有意差は、RNase阻害剤の有無にかかわらず、細胞溶解物からのmiRNAの検出において観察されず、成熟miRNAの顕著な安定性を示唆している。考察miRNAが遺伝子発現を調節することにおいて重要な役割を果たしていることが現在公知であり、ヒト遺伝子の60までがmiRNAにより標的化されることが示唆されているFriedmanetal2009。miRNAの発現プロファイルにおける関心の増加に伴い、成熟miRNAの検出のための迅速で、頑健で、費用効果的な方法が非常に望ましい。本明細書に記載するヘミネステッドリアルタイムRTPCRアッセイは、設計するのが簡単であり、優れた性能を示し、将来同定されうる任意のmiRNAの設計のための柔軟性を提供した。合成miRNA標的によるヘミネステッドリアルタイムRTPCRアッセイは、少なくとも7Logの広いダイナミックレンジ、1RT当たり100分子サブゼプトモルという少数の高感度、および90を上回る高いRTPCR効率を示した。miRNA発現の相対的な定量の他、合成miRNA標準も、全RNA試料からのmiRNA発現の絶対的定量を可能にしうる。以前に報告された、1サイクル当たり45~75秒の標準的サーモサイクリングプロファイルのもとで実施されたmiRNAリアルタイムPCRアッセイChenetal2005;Raymondetal2005;ShiChiang2005;SharbatiTehranietal2008;Yangetal2009とは対照的に、本発明者らのアッセイは、反応混合物の修飾を伴わず、高速サーモサイクリング1サイクル当たり10秒が可能であった。このアッセイの高速サイクリング能力は、ヘミネステッドプライマーにより生成された短いアンプリコン<50bpおよびプローブ加水分解の必要のないSYBRGreenIの迅速な蛍光取得に一部起因しうる。全RNA試料からの成熟miRNAの特異的で高感度な定量は、通常、サイズ分画および前増幅をそれぞれ必要とする。追加の試料取扱い段階の他、サイズ分画は、miRNAの一貫した喪失をもたらし得Wangetal2007、前増幅効率がmiRNA中のA塩基の数により有意に影響されるMestdaghetal2008ことが報告されている。本発明者らのmiRNA定量アッセイを用いて、少量の全RNA1pg~100ngおよび10個という少数の細胞から単離された全RNAを、分画または前増幅が必要なく、効率的に検出することができる。以前は、220~450種のmiRNAの同時逆転写用のメガプレックスmiRNAアッセイが、微量の全RNAまたは単一細胞からのmiRNA発現を定量するために適用されてきたTangetal2006;Mestdaghetal2008。RTオリゴヌクレオチドのより低い濃度を各miRNAのために使用したため、前増幅が、特に開始の全RNAが350ng未満である場合、リアルタイムPCRに先立って必要とされた。本試験において、本発明者らは、24種のmiRNAのマルチプレックスが、RTオリゴヌクレオチド濃度の低下または前増幅の必要性を伴わず、シングルプレックスアッセイと同程度の結論をもたらしたことを示している。従って、本発明者らは、本方法を用いた比較的少数のmiRNAのマルチプレックスが、試料および試薬の必要性を低下させ、さらにmiRNAの確かな定量を可能にしうることを示唆する。これらのマルチプレックスアッセイを、96ウェル中の培養細胞からのmiRNAの直接定量のためにさらに使用することができる。従って、本明細書において報告する本方法は、RNA単離の煩雑な、時間のかかる方法を必要とせずに、微量の単離RNAからだけでなく、溶解細胞からも直接、miRNA発現の確かで迅速なハイスループット定量的プロファイリングが可能である。本試験において、前駆体からの成熟miRNAの特異的な検出は、ステムループ二次構造を伴うRTオリゴヌクレオチドにより達成される。前駆体miRNAの発現レベルはしばしば成熟miRNAと相関するがCalinetal2004;Schmittgenetal2004、miRNAの成熟が調節可能であり、それによって前駆体miRNAが発現されたが、その成熟形態が検出不可能であったことは、珍しくないAmbrosetal2003;Michaeletal2003;Wulczynetal2007;Schmittgenetal2008。miRNAのプロセシングと成熟の調節の間で判別するために、成熟miRNAおよび前駆体miRNAの両方についての特異的アッセイが非常に望ましい。本発明者らは、ステムループ直鎖ではないRTオリゴヌクレオチドが成熟前駆体ではないmiRNAを優先的に逆転写することを見出した。ステムループ戦略が、以前、複製中のレトロウイルスのセンス鎖の特異的な逆転写のために成功裏に適用されてきたAnwaretal2006。直鎖RTオリゴヌクレオチドは、成熟miRNAの効率的な逆転写のためにmiRNA特異的配列の少なくとも7ヌクレオチドを含むはずであることが示唆されているRaymondetal2005。本試験において使用した直鎖RTオリゴヌクレオチド6つのmiRNA特異的ヌクレオチドを有するによる、プレmiRNAに対する成熟miRNAの判別が悪いことは、成熟miRNAの非効率的な逆転写に起因する可能性が高く、以前の知見と一致するChenetal2005。これらの結果は、ステムループ二次構造が逆転写の間にRTオリゴヌクレオチドと成熟miRNAの間の短い塩基対を安定化させうることを示唆した。miRNAは、標的認識の決定的な決定要因である、miRNAの5の2~7ヌクレオチドに及ぶ同一のシード配列に基づき、ファミリー例えば、let7ファミリーにグループ分けされるLewisetal2005。同じファミリーのmiRNAはいくつかの共通する標的および機能を共有する可能性が高いが、ファミリーの特定のメンバーが特定の生理学的プロセスおよび疾患状態に関与しうる。例えば、let7bは、年齢とともに特異的に上方調節され、減退した幹細胞の自己再生に関与することが見出されたNishinoetal2008。let7dの低発現は、頭頸部扁平上皮癌の予後マーカーとして示唆されChildsetal2009、let7iは、ヒト上皮性卵巣癌の新規バイオマーカーとして同定されたYangetal2008。そのようなものとして、これらのmiRNAの特異的で定量的な検出は、バイオマーカーの開発のためおよびmiRNAの生合成に関する試験のために必要とされる。以前には、let7ホモログの判別は、TaqManリアルタイムRTPCRアッセイを用いて達成され、それにより、miRNA特異的RT後、共通のリバースプライマーがPCRのために使用され、miRNA特異的TaqManプローブが判別のために必要とされたChenetal2005。同様の戦略を用いるが蛍光プローブを使用しないアッセイは、let7ホモログの有意により不良な判別を経験したRaymondetal2005;ShiChiang2005;SharbatiTehranietal2008。本発明者らは、アッセイの特異性を、ヘミネステッドmiRNA特異的リバースPCRプライマーにより劇的に増強することができ、蛍光プローブの使用を必要としないという仮説を立て、それを示した。この方法を使用して、全てのlet7miRNAは、TaqManリアルタイムRTPCRと同程度の、ある場合においては、それにまさる、優れた判別を伴う安価なSYBRGreenIを使用して特異的に検出されることができるChenetal2005。過剰なRTオリゴヌクレオチドの存在は、PCRの間にリバースプライマーとして働くことができ、このことは非特異的増幅に寄与し得る。これは、特に、PCRにおけるフォワードプライマーが、また、共有配列例、相同miRNAからのcDNAにハイブリダイズすることができる場合、問題である。この問題を軽減するための一般的な習慣は、RT後にcDNA試料を希釈することによりRTオリゴヌクレオチドのキャリーオーバーを低下させることである。しかし、このアプローチでは、常に、特に低存在量の標的miRNAを用いて、アッセイ感度が低下する。低存在量のmiRNAについては、アッセイは、デオキシウリジン残基を用いてRTオリゴヌクレオチドを修飾し、リアルタイムPCRに先立ちUDGを用いてcDNAを処理することによりさらに改善される。UDGが最初にEcoliから精製され、ウラシル含有DNAからウラシルを切断できることが見出されたLindahletal1977。ウラシル残基の放出はDNA上にアピリミジン部位をもたらし、PCRの間にDNAポリメラーゼによる複製を遮断することができるLongoetal1990。UDG処理によって、未使用のdURTオリゴヌクレオチドがPCRプライマーとしての役割を果たせなくなった可能性が高い。これは、最大の特異性が望まれているか、あるいは判別をRTの間に達成することが困難である状況において簡単で魅力的なアプローチである例えば、let7aおよびlet7fは、RTプライミングのための同一の3配列を共有する。miRNAは、正常な脳と比較して、神経膠芽腫において異なって発現しており、これらの調節不全miRNAの多くが神経膠芽腫の成長、浸潤、および化学療法抵抗性に関与していることが公知であるLawlerChiocca2009;Lietal2009。選択されたmiRNAのヘミネステッドリアルタイムRTPCRアッセイを使用して、GDNFが、MEKERK12MAPKシグナル伝達経路を介してmiR7、miR21、miR218、let7f、let7g、およびlet7iの発現を調節することが見出された。これらのGDNF誘導miRNAの機能的意義は、依然として調査の過程にある。本明細書において開発した迅速なハイスループット方法を使用して、それは、現在miRNA発現における変化をプロファイリングすることによる薬物スクリーニングのために実行可能である。パブリックドメインにおけるmiRNAの数は、現在17,000を上回りKozomaraGriffithsJones2011、インシリコ予測およびインビボ検証例えば、ディープシークエンシングなどの両方を用いて増加すると予測される。miRNA発現の分析についての継続的な要望により、本試験において示されるヘミネステッドリアルタイムRTPCRアッセイは、機能的な成熟miRNAの迅速かつ確実な検出のための高性能な方法を提供する。本明細書において引用される全ての刊行物および特許出願は、各々の個々の刊行物または特許出願が参照により組み入れられるために具体的および個々に示されるかのように、本明細書において参照により組み入れられる。任意の刊行物の引用は、出願日に先立つその開示のためであり、本発明が先行発明によってそのような刊行物に先行する権利がないことを認めるものと解釈すべきではない。本明細書および添付の特許請求の範囲において使用されるように、単数形a、an、およびtheは、文脈が明確に別のことを指示しない場合、複数形の参照を含む。本明細書および特許請求の範囲において使用されるように、用語含む、含んでいる、含む、およびこれらの用語の他の形態は、非限定的な包括的な意味において、すなわち、任意の他の要素または構成成分を除外することなく、特定の列挙する要素または構成成分を含むことが意図される。本明細書および添付の特許請求の範囲において使用されるように、与えられた全ての範囲またはリストは、任意の中間の値もしくは範囲または本明細書に含まれる任意のサブリストを伝達することを意図する。別に定義しない場合、本明細書において使用される全ての技術用語および科学用語は、本発明が属する技術分野の当業者に共通して理解される同じ意味を有する。前述の発明は、理解を明確にする目的のために例示および実施例によりある程度詳細に記載されているが、本発明の開示に照らして、添付の特許請求の範囲の精神および範囲から逸脱することなく、ある一定の変更および修正がそれに対してなされうることが当業者には容易に明らかである。参考文献"