"パナックス属に属する植物の葉および/または茎から得られる抽出物を活性成分として含む抗癌薬またはその補助薬用の組成物。前記パナックス属に属する植物は、Panaxginseng、Panaxquinquefolium、Panaxnotoginseng、Panaxpseudoginseng、PanaxjaponicumおよびPanaxvietnamensisよりなる群から選択される1種以上であることを特徴とする請求項1に記載の組成物。前記抽出物は、多糖を含むことを特徴とする請求項1に記載の組成物。前記抽出物は、前記葉および/または茎を水中で加熱すること水熱処理により得られることを特徴とする請求項1に記載の組成物。前記多糖は、中性糖、ウロン酸および/またはタンパク質を含む糖タンパクからなることを特徴とする請求項3に記載の組成物。前記多糖は、KDOを含むことを特徴とする請求項5に記載の組成物。前記多糖の糖組成は、ラムノース、フコース、アラビノース、キシロース、マンノース、グルコース、ガラクトース、ガラクツロン酸、グルクロン酸、KDOおよびDHAを含むことを特徴とする請求項5に記載の組成物。癌細胞の増殖および転移を抑制する作用を有することを特徴とする請求項1~7のいずれかに記載の組成物。上皮由来または非上皮由来の固形癌に対して治療および/または予防作用を有することを特徴とする請求項1~7のいずれかに記載の組成物。癌に対して治療および/または予防作用を有することを特徴とする請求項1~7のいずれかに記載の組成物。造血促進、骨髄保護、免疫促進、放射線照射治療補助、抗ウィルスおよび抗菌活性のうち少なくとも1つを有することを特徴とする請求項1~7のいずれかに記載の組成物。造血促進活性を有することを特徴とする請求項11に記載の組成物。白血球および血小板の減少を含む、一般的な抗癌薬の副作用を低減する活性を有することを特徴とする請求項11に記載の組成物。骨髄および脾臓を放射線照射から保護する活性を有することを特徴とする請求項11に記載の組成物。NKT細胞、NK細胞、マクロファージ、T細胞およびB細胞を含む免疫系の活性を促進する活性を有することを特徴とする請求項11に記載の組成物。NKT細胞、NK細胞、マクロファージ、T細胞およびB細胞を活性化し、抗癌物質である腫瘍壊死因子、γ-インターフェロンおよびインターロイキン1を分泌させて抗癌、抗菌および/または抗ウィルス活性を示すことを特徴とする請求項11に記載の組成物。抗癌薬および/またはその補助薬を更に含むことを特徴とする請求項1~7のいずれかに記載の組成物。前記抗癌薬は、タキソール、シスプラチンまたはシクロホスファミド、或いはそれらのうち2種以上であることを特徴とする請求項17に記載の組成物。担体または賦形剤を更に含むことを特徴とする請求項1~7および17のいずれかに記載の組成物。前記担体または賦形剤は、薬学的に許容される、飲料または食物の形態のものであることを特徴とする請求項19に記載の組成物。活性成分としての請求項1~7のいずれかの組成物、および薬学的に許容される担体または賦形剤を含む、造血促進、骨髄保護、免疫促進、抗癌薬補助薬、放射線照射治療補助、ウィルスおよび微生物病原体に対する保護、癌予防および癌治療を目的とする医薬組成物。制酸薬を更に含むことを特徴とする請求項21に記載の医薬組成物。単回または複数回投与用の、錠剤、散剤、硬または軟カプセル剤、分散液、注射液、乳液および非経口投与形態よりなる群から選ばれる形態であることを特徴とする請求項22に記載の医薬組成物。前記活性成分の投与量は、成人の平均体重を基準として1日あたり0.1~6,000mgであることを特徴とする請求項21~23のいずれかに記載の医薬組成物。パナックス属に属する植物以降人参と称するの葉および/または茎から抽出物を調製する方法であって、a人参の葉および/または茎を水中で加熱水熱処理して、粗抽出溶液を得る工程;b任意に、前記粗抽出溶液を濃縮する工程;c前記粗抽出溶液に含まれる多糖を有機溶媒を用いて沈殿させ、前記多糖を分離する工程;およびd前記有機溶媒を除去して多糖画分を得る工程を含む抽出物を調製する方法。前記工程cおよびdの前に、先行する工程で得られた生成物をアニオン交換クロマトグラフィーにより精製し、透析する工程を更に含むことを特徴とする請求項25に記載の抽出物を調製する方法。前記水熱処理を、50~180°Cで0.5~20時間行うことを特徴とする請求項25に記載の抽出物を調製する方法。前記有機溶媒は、アルコールまたはアセトンであることを特徴とする請求項25に記載の抽出物を調製する方法。前記アルコールは、エタノール、メタノール、イソプロピルアルコールまたはプロパノールであることを特徴とする請求項28に記載の抽出物を調製する方法。請求項25~29のいずれかの抽出物を調製する方法により得られる抽出物を含む組成物であって、中性糖の含有量は30~80、ウロン酸の含有量は10~60、タンパク質の含有量は0.01~10であることを特徴とする組成物。前記抽出物は、タンパク質を含まないことを特徴とする請求項30に記載の組成物。前記抽出物は、パナックス属に属する植物の葉および/または茎の多糖を含み、前記多糖の分子量は、6,000~340,000Daであることを特徴とする請求項30に記載の組成物。前記多糖の糖組成は、ラムノース、フコース、アラビノース、キシロース、マンノース、グルコース、ガラクトース、ガラクツロン酸、グルクロン酸、KDOおよびDHAを含むことを特徴とする請求項30~32のいずれかに記載の組成物。本発明者らは、人参の葉および/または茎からの抽出物が、免疫細胞NKT細胞、NK細胞、マクロファージなどを活性化し、またサイトカインα-インターフェロン、腫瘍壊死因子-αなどの分泌を促進して、癌細胞の増殖および転移を抑制し、造血促進作用を補助し、既存の抗癌薬や放射線照射療法における副作用をも低減することを初めて見出した。本発明は、これらの発見に基づいてなされたものである。従って、本発明の目的は、人参の葉および/または茎から得られ、癌抑制作用、造血促進作用、骨髄保護作用、放射線照射感受性保護作用などを有する抽出物を提供することにある。本発明の他の目的は、有効成分として前記抽出物を含む組成物を提供することにある。本発明の更に他の目的は、前記組成物の新規な用途、例えば抗癌薬、癌転移抑制薬、造血促進薬、放射線照射副作用抑制薬、抗癌薬副作用抑制薬、自己免疫疾患治療薬などを提供することにある。本発明の他の目的は、人参の葉および/または茎から前記抽出物を得る方法を提供することにある。本発明による組成物は、有効成分として、パナックス属に属する植物以降、パナックス属植物または時に人参と称するの葉および/または茎を特定の条件下で処理することによって得ることができる抽出物を含む。本発明で用いるこれらのパナックス属植物には、例えばPanaxginsengC.A.Mayer、Panaxquinquefolium、Panaxnotoginseng、Panaxpseudoginseng、Panaxjaponicum、PanaxvietnamensisHaetGrushv.などが含まれ、本発明においてはこのうち1種以上を用いることができる。本発明による組成物の形状には、上記抽出物の効果が示される限り特に制限はなく、例えば固相、懸濁液相、乳液相、液相などが含まれる。組成物中の上記抽出物の量についても、上記抽出物が特定の目的のための活性成分として機能する限り特に制限はない。以下、本発明をより詳細に記述する。本発明によれば、パナックス属植物の葉および/または茎から抽出物を得るためには、それらの葉および/または茎をまず水pH4~1010~20当量中、50~180°Cで0.5~20時間加熱する。上記の通り、パナックス属植物はPanaxginsengC.A.Mayer、Panaxquinquefolium、Panaxnotoginseng、Panaxpseudoginseng、Panaxjaponicum、PanaxvietnamensisHaetGrushv.などのうち1種以上であってよい。この水熱処理の後、人参の葉および/または茎や残渣remnantsを濾過により除去する。微細な浮遊粒子は、精密濾過法finefilteringprocessおよび遠心分離により除去する。最終的な濾過法は、孔径0.45μmのフィルターや限外濾過器を用いて行ってよく、遠心分離法は、7000rpmで30分行いうる。そのようにして得られた溶液を、それからの多糖の分離を容易にするため、例えば蒸発により濃縮する。濃縮法は、70°C、760mmHgにおいて、糖屈折計にて測定した際の溶液濃度が20brixになるまで行いうる。濃縮した溶液から多糖を効果的に回収するため、0.1~1M、好ましくは0.5~1MのNaClを濃縮した溶液に添加する。そして、1~4倍容、好ましくは2~4倍容のアルコールメタノール、エタノール、プロパノールなどまたはアセトンを用いて多糖を沈殿させる。沈殿させた多糖を95以上のアルコールまたはアセトンで数回洗浄して水および不純物を除去し、その後透析または限外濾過を行い塩およびアルコールを除去する。そのようにして得られた多糖を、熱風乾燥、真空乾燥、凍結乾燥、噴霧乾燥などのうち一種により乾燥させる。標的とする薬物およびその用途に応じ、精製法をより効率的に選択することができる。例となる方法を以下に示す。分離および濾過が完了した後、溶液をpH約8.0、0.4MNaCl/10mMTris-HClに調整し、次いでアニオン交換樹脂のカラム流速30ml/分にかける。アニオン交換樹脂は、事前に0.4MNaCl/10mMTris-HClで平衡化し、着色物質や不純物のみが吸着され、多糖は吸着されないようにしておかなければならない。アニオン交換樹脂のカラムを緩衝溶液で十分洗浄する。前記カラムを通過した溶液をpH約6~7に調整し、次いで吸着剤樹脂のカラム流速30~50ml/分にかける。前記カラムを蒸留水DWで十分洗浄する。3倍エタノール沈殿法three-timeethanolprecipitationmethodを実施し、全ての多糖がカラムから出たか否かチェックする。流出溶液に3倍容の95エタノールを添加して、多糖のみを効率よく沈殿させ、多糖を濃縮する。多糖を回収するため、遠心分離5000rpm、15分および透析を行う。そのようにして得られた溶液をpH8に調整する。その溶液に10mMTris-HCl緩衝溶液pH8を添加した後、前記溶液をアニオン交換樹脂のカラム流速15~20ml/分にかける。前記カラムを緩衝溶液で十分洗浄した後、0.5MNaClで溶出させる。溶出液に3倍容のエタノールを添加して多糖を沈殿させ、次いで遠心分離を行いそれらを回収する。回収したペレットを95エタノールで2回洗浄した後、透析分子量カットオフが6000の透析膜に対してを行って残存エタノールおよび低分子量の不純物を除去し、次いで凍結乾燥する。溶媒抽出により得られた抽出物を3回蒸留したtripledistilled水で希釈して濃度を1mg/mlとし、分析した。その結果、PanaxginsengC.A.Mayerでは、中性糖の含有量が68.9、ウロン酸の含有量が15.9、タンパク質の含有量が8.7であり、Panaxquinquefoliumでは、中性糖の含有量が57.8、ウロン酸の含有量が35、タンパク質の含有量が5.4であることが示された。イオン交換樹脂、吸着剤樹脂などを用いる精巧なelaborate分離/精製法により得られた抽出物を3回蒸留した水で希釈して濃度を1mg/mlとし、分析した。その結果、PanaxginsengC.A.Mayerでは、中性糖の含有量が51.3、ウロン酸の含有量が46.8、タンパク質の含有量が0.1糖の分布は、ラムノース5.97、フコース1.22、アラビノース14.86、キシロース0.44、マンノース1.93、グルコース3、ガラクトース22.7、ガラクツロン酸31.4、グルクロン酸14.4、KDO2-ケト-3-デオキシオクツロソン酸1.38およびDHA3-デオキシ-D-リキソ-2-ヘプツロサール酸3-deoxy-D-lyxo-2-heptulosaricacid1.02であったであり、Panaxquinquefoliumでは、中性糖の含有量が49、ウロン酸の含有量が50.8、タンパク質の含有量が0.2糖の分布は、ラムノース9.7、フコース4.1、アラビノース8.7、キシロース0.7、マンノース1.5、グルコース1.2、ガラクトース12、ガラクツロン酸44、グルクロン酸5、KDO6およびDHA1.2であったであることが示された。本発明者は、人参の葉および/または茎からの抽出物は、分子量が6,000~340,000Da、平均分子量が約120,000Daであることを見出した。また、糖の組成は人参の種類によって変動し、例えば中性糖については30~80、酸性糖については10~60、タンパク質については0.01~10であるが、糖は一般にラムノース、フコース、アラビノース、キシロース、マンノース、グルコース、ガラクトース、ガラクツロン酸、グルクロン酸、KDOおよびDHAを含んでおり、いずれの抽出物も抗癌、抗転移および/または抗癌薬補助薬作用を示した。人参の葉および/または茎から上記のようにして得られる抽出物または多糖は、免疫系全体例えばNKT細胞、NK細胞、マクロファージ、T細胞、B細胞などを活性化し、また抗癌機能に関連するサイトカインの分泌を促進して、癌細胞の増殖および転移を有意に減少させる。よって、前記組成物を抗癌薬および癌転移抑制薬として用いることができる。また、前記組成物を抗癌薬または放射線照射治療の補助薬それらの副作用を低減させることによるとして用いることができる。本発明による組成物は、それ自体で、または担体医薬の分野において従来許容されているものと組み合わせて、従来の投与形態、例えば経口投与剤丸剤、カプセル剤、液剤、分散液剤など、注射剤などに処方することができる。経口投与において薬物が胃酸で分解されるのを防ぐため、前記組成物を制酸薬と同時投与したり、腸溶性コーティングのある処方にしてもよい。人体への多糖の投与量は、有効成分の吸収速度、不活性化速度、排泄速度や、患者の年齢、性別、現在の容体などを検討して、適切に決定しなければならず、一般には、成人に対し1日あたり100μg~6000mg、好ましくは20~5000mgである。本発明による組成物は、抗癌薬またはその補助薬を更に含んでいてもよく、またそれらと同時投与してもよい。抗癌薬の種類に特に制限はなく、その例にはタキソール登録商標およびシスプラチン登録商標が含まれる。以下の実施例を参照して、本発明をより詳細に記載する。ただし、本発明の範囲はそれらに限定されるものではない。調製実施例1:人参の葉および/または茎からの、多糖粗抽出物の調製PanaxginsengC.A.Mayerの葉および/または茎100gを1リットルの水に添加し、それらから活性成分を抽出すべく100°Cで5時間加熱した。濾過により液相を葉および/または茎から分離し、7,000rpmで30分間遠心分離して、それから不溶性の不純物を除去した。上清多糖を含むを70°C、760mmHgで20brixとなるまで濃縮して、100mlの濃縮溶液を得た。最終濃度1Mとなるよう塩化ナトリウムを添加し、次いで300mlのエタノールを添加した。得られた混合物を1時間放置して沈殿を起こさせた。沈殿物を100mlの95エタノールで洗浄して2回不純物を除去し、次いで透析し、更に凍結乾燥して多糖粗抽出物を得た。Panaxquinquefoliumの葉および/または茎に対しても上記の方法を繰り返し、多糖粗抽出物を得た。調製実施例2:人参の葉および/または茎からの多糖の調製PanaxginsengC.A.Mayer500gを5リットルの蒸留水に添加し、3時間加熱して抽出溶液を調製した。抽出溶液からスラリーをガーゼで分離した。抽出溶液を7,000rpmで20分間遠心分離して、上清を分離した。上清をpH約8.0、0.4MNaCl/10mMTris-HClに調整し、次いでアニオン交換樹脂PA312系強塩基型アニオン交換樹脂、Samyang社製のカラム流速30ml/分にかけた。アニオン交換樹脂は、事前に0.4MNaCl/10mMTris-HClで平衡化し、不純物のみが吸着され、多糖は吸着されないようにした。アニオン交換樹脂のカラムを緩衝溶液で十分洗浄し、前記カラムを通過した溶液をpH約6~7に調整した。得られた溶液を吸着剤樹脂HP-20、三菱製のカラム流速30~50ml/分にかけた。前記カラムを蒸留水DWで十分洗浄し、次いで3倍エタノール沈殿法を行い、溶液が全てカラムを通過したことを確認した。流出溶液に3倍容の95エタノールを添加して、多糖のみを効率よく沈殿させ、多糖を濃縮した。多糖を回収するため、溶液を5000rpmで15分間遠心分離し、次いで透析を行った。得られた溶液をpH8、10mMTris-HClに調整し、アニオン交換樹脂Q-セファロース、ファルマシアバイオテック社製のカラム流速15~20ml/分にかけて吸着させた。カラムを10mMTris-HCl緩衝溶液で洗浄し、0.5MNaClで溶出させた。溶液に3倍容のエタノールを添加して多糖を沈殿させた。溶液を5000rpmで15分間遠心分離して沈殿を得た。沈殿を95エタノールで2回洗浄して不純物を除去し、透析分子量カットオフ6000以下を行って残存エタノールを除去し、次いで凍結乾燥して多糖を得た。Panaxquinquefoliumの葉および/または茎に対しても上記の方法を繰り返し、多糖を得た。調製実施例3:MB40100人参の葉および/または茎からの抽出物の調製および注射用溶液の調製調製実施例2においてアニオン交換樹脂Q-セファロースのカラム流速15~20ml/分にかけた、PanaxginsengC.A.Mayer由来の溶液をシリカゲル充填カラムにかけて、それから発熱性物質を除去した。3倍容のエタノールを添加して多糖を沈殿させ、遠心分離により多糖を回収し、95エタノールで2回洗浄して不純物を除去した。得られた沈殿物segmentを3回蒸留した水に溶解し、透析分子量カットオフ6000以下を行って残存エタノールを除去した。滅菌のため、得られた画分を0.2μm濾過システムに付し、発熱性物質を含まない溶液を調製した。この無菌溶液を3mlバイアル中で凍結乾燥して、多糖画分を得た。乾燥多糖画分を生理食塩水に溶解して注射用溶液を調製し、後述の実施例において用いた。PanaxginsengC.A.Mayerの葉または茎から抽出したこの多糖をMB40100と命名した。実験実施例1:人参の葉および/または茎から得られた抽出物の分析前記調製実施例において調製した抽出物について成分分析を行った。糖の総含有量は、標準物質としてガラクトースを用いたフェノール-硫酸法非特許文献8により測定した。ウロン酸の含有量は、標準物質としてβ-D-ガラクツロン酸を用いたm-ヒドロキシビフェニル法非特許文献9により測定した。タンパク質の含有量は、標準物質としてウシアルブミンを用いたローリー法非特許文献10により測定した。KDO3-デオキシ-D-マンノ-2-オクツロソン酸の含有量は、チオバルビツール酸法により測定した。多糖の分析は、アルジトールアセテートを誘導体とするジョーンズ法非特許文献11を用いて、気-液クロマトグラフィーGLC法により行った。調製実施例1で得られた粗抽出物を3回蒸留した水に溶解して濃度を1mg/mlとし、上記の方法で分析した。その結果、PanaxginsengC.A.Mayerでは、中性糖の含有量が68.9、ウロン酸の含有量が15.9、タンパク質の含有量が8.7であり、Panaxquinquefoliumでは、中性糖の含有量が57.8、ウロン酸の含有量が35、タンパク質の含有量が5.4であることが示された。調製実施例2で得られた粗抽出物を3回蒸留した水に溶解して濃度を1mg/mlとし、上記の方法で分析した。その結果、PanaxginsengC.A.Mayerでは、中性糖の含有量が51.3、ウロン酸の含有量が46.8、タンパク質の含有量が0.1糖の組成は、ラムノース5.97、フコース1.22、アラビノース14.86、キシロース0.44、マンノース1.93、グルコース3、ガラクトース22.7、ガラクツロン酸31.4、グルクロン酸14.4、KDO1.38およびDHAd-デオキシ-D-リキソ-2-ヘプツロサール酸1.02であったであり、Panaxquinquefoliumでは、中性糖の含有量が49、ウロン酸の含有量が50.8、タンパク質の含有量が0.2糖の組成は、ラムノース9.7、フコース4.1、アラビノース8.7、キシロース0.7、マンノース1.5、グルコース1.2、ガラクトース12、ガラクツロン酸44、グルクロン酸5、KDO6およびDHA1.2であったであることが示された。分子量は、GS-520HQ、GS-320HQおよびGS-220HQShodexAsahipackGSシリーズ、昭和電工製を直列に連結して、HPLCで測定した。この測定によれば、人参の葉および/または茎からの抽出物は、分子量が6,000~340,000Da、平均分子量が約120,000Daであった。糖の組成は人参の葉および茎の種類によって変動し、例えば中性糖については30~80、酸性糖については10~60、タンパク質については0.01~10であるが、糖の組成は一般にラムノース、フコース、アラビノース、キシロース、マンノース、グルコース、ガラクトース、ガラクツロン酸、グルクロン酸、KDOおよびDHAを含んでおり、いずれの抽出物も抗癌抗転移作用を示し、また抗癌薬の補助薬機能が見られた。比較実施例1:PanaxginsengC.A.MayerおよびPanaxquinquefoliumから抽出された多糖の活性の比較各調製実施例で得られた各抽出物の肺癌転移抑制能を測定したところ、PanaxginsengC.A.Mayerでの抑制率は88.3、Panaxquinquefoliumでの抑制率は83.1であることが判明した図1を参照。以下の実施例においては、PanaxginsengC.A.Mayerから抽出された多糖であるMB40100を用いた。これは、このものが癌転移に対しより高い抑制率を示すことによる。実験実施例2:MB40100の固形癌に対する抗癌作用Sarcoma180細胞非上皮性癌細胞株1×106個を、BALB/cマウス1群あたり20匹の鼠径部に注射した。注射より3日後、10日間にわたり、MB40100を1日1回経口投与投与量:10および20mg/kgし、経口投与の後、癌の大きさを対照群のそれと比較した。UV2237P細胞上皮性癌細胞株に対しても上記の方法を繰り返した。図2に示す通り、非上皮性癌細胞株に関しては、MB40100処理により、癌の大きさが投与量10mg/kgでは60、投与量20mg/kgでは70減少した。上皮性癌細胞株に対しては、対応する投与量において、癌の大きさが各々65および78減少した。実験実施例3:MB40100の肺癌転移に対する予防作用7.5FBS、ビタミン溶液、ピルビン酸ナトリウム、非必須アミノ酸およびL-グルタミンを含むイーグルスMEM培地中で、Colon26-M3.1細胞高度転移性結腸癌細胞を培養した。この癌細胞をBALB/cマウスに注射し、癌転移度を測定することにより、Colon26-M3.1細胞の肺癌転移実験を行った非特許文献12。MB40100をPBSに溶解して0.2μmの滅菌濾紙で濾過し、種々の投与量500μg、100μg、20μgおよび4μgで各マウスに静脈注射した。注射から2日後、前記Colon26-M3.1細胞を注射マウス1匹あたり細胞2.5×104個し、癌転移に対する予防作用を評価した。注射から14日後、マウスを屠殺してその肺をブアン液中に保存した。肺に転移した癌細胞数を計数した。図3に示す通り、静脈注射したMB40100は、Colon26-M3.1の肺への転移を有意に阻害した。実験実施例4:MB40100の肺癌転移に対する治療作用7.5FBS、ビタミン溶液、ピルビン酸ナトリウム、非必須アミノ酸およびL-グルタミンを含むイーグルスMEM培地中で、Colon26-M3.1細胞高度転移性結腸癌細胞を培養した。この癌細胞をC57BL/6マウスおよびBALB/cマウスにそれぞれ注射し、癌転移度を測定することにより、Colon26-M3.1細胞の肺癌転移実験を行った非特許文献12。MB40100をPBSに溶解して0.2μmの滅菌濾紙で濾過し、種々の投与量で各マウスに静脈注射した。前記Colon26-M3.1細胞をマウスに注射マウス1匹あたり細胞2.5×104個し、転移癌の増殖を誘引した。注射から1日後および4日後、各々、500μg、100μgおよび20μgのMB40100をマウスに静脈注射し、癌転移に対する治療作用を測定した。癌細胞の注射から14日後、マウスを屠殺してその肺を取り出し、ブアン液中に保存した。肺に転移した癌細胞数を顕微鏡を通じて計数した。図4に示す通り、静脈注射したMB40100は、投与量に応じて、肺に転移したColon26-M3.1細胞の増殖を有意に阻害した。実験実施例5:MB40100により活性化された、癌細胞に対するNK細胞介在細胞毒性の測定MB40100により活性化された、癌細胞に対するNK細胞介在細胞毒性の測定を、放射性同位元素51Crの活性を測定することにより評価した非特許文献13。500μg、100μg、20μgおよび4μgのMB40100を1群あたり2匹のBALB/cマウスにそれぞれ静脈注射した。注射から2日後、マウスの脾細胞を採取した。丸底96穴プレート中の脾細胞を含む各溶液に、51Cr-標識Yac-1細胞を、各々エフェクター脾細胞:標的Yac-1細胞比E/T比100:1、50:1、25:1および12.5:1で添加した。それらを5CO2、37°Cの条件下で6時間培養した。培養後、プレートを10分間遠心し、次いで各ウェルの上清を綿棒で吸収した。ガンマカウンターを用いて放射性同位元素の量を測定した。NK細胞により生じた細胞毒性を、下記式:細胞毒性=実験的放出-自然放出/最大放出-自然放出×100により放射活性カウント/分として算出した。図5からわかるように、MB40100を注射したマウスの脾細胞におけるNK細胞の活性は、MB40100の濃度に依存して増加し、500μg、100μgおよび20μgを投与した群では、対照群に比べ各々3~10倍に増加した。NK細胞の活性は通常、E/T比に応じて幾分変化するが、この実験実施例におけるNK細胞の活性は、E/T比に関係なく有意に増加した。実験実施例6:顆粒球マクロファージコロニー形成単位GM-CFUの形成による造血機能の促進35mmペトリ皿2mmグリッド付き、NalgenNunc製に、1mlあたり細胞1×105個の骨髄細胞を入れ、MethoCultカナダ国StemCell社製アガー1mlを用いて、種々の濃度のMB40100で処理し、インキュベーター中37°C、5CO2の条件下で7日間培養した。対照群にはMB40100なしのアガーを用いた。7日間培養後、培養した35mmペトリ皿を2mmグリッド付き60mmペトリ皿に乗せ、コロニー数を顕微鏡を通じて計数した。10μg処理群ではコロニー数が168であり、対照群と差がなかったが、50μgおよび100μg処理群では、対照群に比べ各々コロニー数が36.6および32.5増加した図6を参照。実験実施例7:MB40100の、抗癌薬による造血抑制のレベルを低減させる作用抗癌薬シクロホスファミドなどは一般に、生体内で免疫抑制薬として機能し、免疫系の細胞数を減少させる。これは抗癌薬の代表的な副作用である。本実施例においては、MB40100の同時投与シクロホスファミド投与により起こる免疫抑制を低減させることを期待したものにおいて免疫細胞数を測定した。マウスに対しシクロホスファミド250mg/kgを投与し、その24時間および48時間後に異なる投与量10mg/kgおよび20mg/kgのMB40100を各々腹腔内投与したabdominallyadministered。7日後、マウスを屠殺して骨髄細胞および脾細胞を取り出し、これらの細胞数をトリパンブルー排除法で計数した。遠位眼球静脈eyeballdistalveinからヘパリン処理ガラス毛細管を用いて末梢血を素早く収集し、K3-EDTA処理血液収集管blood-gatheringtubeに回収して、自動血球分析装置automaticglobuleanalyzerで試験した。A.シクロホスファミド投与後の白血球WBC数の変化自動血球分析装置で測定したところ、正常マウスの遠位眼球静脈から収集した血液中の白血球数は平均7800であったが、シクロホスファミド投与マウスでは、白血球数は5300正常マウスに比べ約30減少であった。一方、シクロホスファミド投与の2日後にMB40100を10mg/kgおよび20mg/kg投与したマウス群では、白血球数は各々6600および6400シクロホスファミドのみを投与したマウスに比べ約15多いであった。更に、シクロホスファミド投与の1日後にMB40100を投与したマウス群では、白血球数は対照群に比べ12.1多かったが、MB40100の濃度に応じた差はなかった。また、シクロホスファミド投与の前後、計2回のMB40100投与を受けたマウス群では、白血球数は対照群に比べ約15多かった図7を参照。B.末梢血中の血小板数の変化シクロホスファミドのみを投与したマウスでは、血小板数は正常マウスに比べ約56少なかった。MB40100を投与すると、シクロホスファミドのみを投与したときに比べ血小板数は約6.6増加し、回復効果を示した。また、MB40100投与がシクロホスファミド投与の前か後かによらず、増加は6~7であった図8を参照。C.脾細胞数の変化シクロホスファミドのみを投与したマウスでは、脾細胞数は正常マウスに比べ約72.8少なかった。一方、シクロホスファミド投与前にMB40100を20mg/kg投与すると、シクロホスファミドのみを投与したときに比べ脾細胞数は約26.8増加した。また、シクロホスファミド投与後にMB40100を10mg/kgおよび20mg/kg投与したマウス群では、各々、脾細胞数は約33および43増加した。以上の結果は、抗癌薬による免疫細胞の抑制を、MB40100が低減しうることをしめすものである図9を参照。D.骨髄細胞数の変化シクロホスファミド投与の7日後、屠殺したマウスの骨髄細胞数を計数した。正常マウスの骨髄細胞密度は1mlあたり41.1×106個であったが、シクロホスファミドを投与したマウスの骨髄細胞密度は1mlあたり29.6×106個であった抗癌薬により29.2減少。しかし、シクロホスファミド投与の2日前にMB40100を10mg/kgおよび20mg/kg投与したマウス群では、シクロホスファミド投与マウス群に比べ、細胞数が各々17.1および18.1多かった。また、シクロホスファミド投与後にMB40100を20mg/kg投与したマウス群では、細胞数が10.78多かった図10を参照。実験実施例8:MB40100の、放射線照射に対する保護作用癌治療においては、しばしば放射線照射療法を抗癌剤投与と併用するが、これは骨髄細胞を破壊し、正常免疫細胞の形成複製に負の作用を有するので、造血および免疫の機能を低下させる。この実験では、MB40100の同時投与が、放射線照射処理に伴う造血および免疫の機能の低下を低減しうるか否かを試験した。BALB/cマウス雄、体重18~22gにMB40100を腹腔内投与し、48時間後、4.5Gy半数致死量semi-lethalamountのコバルト60Coγ線に曝露させた。照射から5日および9日後、いずれにおいてもirrespectively、マウスを屠殺して骨髄細胞および脾細胞を採取し、各々の細胞数をトリパンブルー排除法で計数した。対照群に対しては、MB40100に代えてPBSを投与した。A.脾細胞数の変化正常マウスに4.5Gy半数致死照射量のコバルト60Coγ線を照射し、その5日後には、脾細胞数は1mlあたり15.8×104個であり、これは正常マウスの脾細胞数のわずか3であったが、9日後には14.8まで回復した。しかし、照射2日前に10mg/kgのMB40100を投与したマウス群では、照射5日後の脾細胞数が7.6であり、9日後には18.2まで回復した。照射2日前に20mg/kgのMB40100を投与したマウス群では、照射5日後の脾細胞数が4.610mg/kg投与群より少ないであり、9日後にはそれ以上増えていなかった。また、照射1日後にMB40100を投与したマウス群では、脾細胞数は増加していたが、MB40100の濃度に応じた差は見られなかった。照射の前や後にMB40100を投与したマウス群では、MB40100を投与していないマウス群に比べ脾細胞数が増加していた図11を参照。B.骨髄細胞数の変化照射5日後、マウスの左大腿部から骨髄細胞を回収したところ、細胞数は正常マウスの5.3であった。照射9日後には、正常マウスの11.8まで増加した。しかし、照射の前や後にMB40100を10mg/kgおよび20mg/kg投与したマウス群では、未処理マウスに比べ、照射5日後に屠殺したマウスで6~7、照射9日後に屠殺したマウスで約15.7細胞数が多かった。よって、MB40100は、放射線照射マウスの骨髄細胞の保護を補佐し、造血機能を維持することが確認された図12を参照。実験実施例9:免疫細胞の活性化および抗癌性サイトカインの生成C57/BL6マウスにMB40100を10mg/kg腹腔内投与し、1時間ごとに脾細胞を採取した。免疫細胞に対し蛍光標識受容体を用いるFACS分析を行った。その結果、免疫性に関連する全ての細胞NKT細胞、NK細胞、樹状細胞、マクロファージ、CD4細胞、CD8細胞、B細胞などが活性化され、MB40100投与後約16時間後に活性化が最大となることが示された。各免疫細胞から分泌されるサイトカインの量を測定するため、C57/BL6マウスにMB40100を10mg/kg腹腔内投与し、16時間後に脾細胞を採取した。各免疫細胞から分泌されるサイトカインの量を、各免疫細胞に対する蛍光標識受容体および抗サイトカイン抗体を用いて、細胞内染色法で測定した。その結果、MB40100を投与したマウス群では、NKT細胞およびT細胞から分泌されるTNF-aおよびIL-3が増加し、マクロファージおよび樹状細胞から分泌されるIL-12およびTNF-aも増加することが示された図14を参照。実験実施例10:抗癌薬と同時投与したMB40100の相乗効果1C57BL/6マウスに、癌細胞株B16-BL16を皮内注射したマウス1匹あたり細胞1×105個。癌細胞注射の1日後から、0.2μmのフィルターで濾過したMB40100を、3日おきに4回静脈注射したマウス1匹あたり1mgおよび200μg。抗癌薬シスプラチンを静脈注射した各々マウス1匹あたり100μg、50μgおよび20μg。マウスを、抗癌薬のみ投与したものと、MB40100を抗癌薬と同時に投与したものの2群に分け、癌の大きさおよび重さを測定した。その結果、同時投与群のマウスでは、癌細胞の増殖が約43抑制されることが示された。即ち、MB40100をシスプラチンと同時に投与したマウス群では、マウスは活発に動き、正常マウスの体重に回復した。これに対し、50μgのシスプラチンのみ投与したマウス群では、重篤な副作用体重低下、運動減少などが観測された。この結果、MB40100は、造血系の刺激および免疫反応の活性化に関与すると考えられる図15および16を参照。実験実施例11:抗癌薬と同時投与したMB40100の相乗効果2実験対象として胸腺欠損ヌードマウスを用いた。抗癌薬タキソールを投与したマウス群、MB40100を投与したマウス群並びにタキソールおよびMB40100を同時投与したマウス群において、癌の大きさを測定した。マウスの状態と毒性を考慮し、タキソールは、癌注射の6日後から、3日おきに7回投与した12.5mg/kg。MB40100は、癌注射の2日前に1回、癌注射の後は3日おきにタキソール投与の日とは重複しない腹腔内投与した10mg/kg。使用した細胞株はPC-3であり、マウス1匹あたり細胞2×106個を皮下注射した。癌注射の14~31日後に、癌の大きさを測定した。タキソールおよびMB40100を同時投与した群における癌の大きさは、タキソールのみを投与した群における癌の大きさよりも小さかった。このことは、MB40100と抗癌薬の同時投与は、固形癌の抑制に関して相乗効果を有することを示している。実験実施例12:錠剤の調製上記処方箋の成分を均一に混合し、次いで打錠機で、1錠あたり500mgの錠剤となるように圧縮した。実験実施例13:散剤の調製上記処方箋の成分を均一に混合し、次いで組み立て装置assemblymachineで、1カプセルあたり500mgとなるようにカプセルに充填した。"