細胞を含む体液と赤血球凝集剤とを混合し、静置することにより赤血球を沈降させて除去し、細胞を含む層の液を閉鎖系培養装置に閉鎖的に送液し、そして培養を行う、ことを含む、体液中に含まれる細胞の閉鎖的培養方法。細胞を含む体液と赤血球凝集剤とを混合し、静置することにより赤血球を沈降させて除去し、そして細胞を含む層の液を閉鎖系培養装置に閉鎖的に送液する、ことを含む、閉鎖的にバフィーコート層を分取する方法。赤血球凝集剤が含まれる容器に対して、チューブを介して閉鎖系で細胞を含む体液を送液することにより、細胞を含む体液と赤血球凝集剤とを混合する、請求項1または2に記載の方法。細胞を含む体液が、血液、臍帯血、骨髄液、腹水液または胸水液から選択される、請求項1~3のいずれか1項に記載の方法。赤血球凝集剤が、デキストラン、ヒドロキシエチルセルロースHESから選択される、請求項1~4のいずれか1項に記載の方法。赤血球凝集剤の終濃度が、00005~100である、請求項1~5のいずれか1項に記載の方法。赤血球凝集剤の終濃度が、01~375である、請求項6に記載の方法。体液の赤血球凝集剤を含む容器への送液が、圧力差、ポンプ、重力、により行われる、請求項3~7のいずれかに記載された装置。赤血球凝集剤が含まれる容器に対して、滅菌したチューブを介して閉鎖系で、注射筒で採血された血液を送液する、請求項3~8のいずれか1項に記載の方法。赤血球凝集剤が含まれる容器に対して、滅菌したチューブを介して閉鎖系で、骨髄穿孔針を装着したシリンジで採取した骨髄液を送液する、請求項3~8のいずれか1項に記載の方法。赤血球凝集剤が含まれる容器に対して、滅菌したチューブを介して閉鎖系で、採取した臍帯血採取用バッグに採取された臍帯血を送液する、請求項3~8のいずれか1項に記載の方法。採取された細胞を含む体液を収容するための第1の容器、赤血球凝集剤および培養液を収容する第2の容器、第1の容器と第2の容器とを連結する第1の連絡手段、そして連絡手段を介して第1の容器の血液を第2の容器へと移動させる第1の送液手段、を装着する、閉鎖系で細胞を含む体液からバフィーコート層を分離する装置。第1の送液手段が、圧力差、ポンプ、重力を含む、請求項12に記載された装置。第1の容器、第2の容器および第1の連絡手段が、滅菌されたものである、請求項12または13に記載の装置。第1の容器が、臍帯血採取用バッグ、真空採血管、採血バッグ、から選択される、請求項12~14のいずれか1項に記載の装置。閉鎖系で血液から分離されたバフィーコート層を収容する第2の容器、採取したバフィーコートを培養するための第3の容器、第2の容器と第3の容器とを連結する第2の連絡手段、そして第2の連絡手段を介して第2の容器のバフィーコート層を第3の容器へと移動させる第2の送液手段、を装着する、バフィーコート層を分取する装置。第2の送液手段が、圧力差、ポンプ、重力を含む、請求項16に記載された装置。第2の容器、第3の容器および第2の連絡手段が、滅菌されたものである、請求項16または17に記載の装置。第3の容器が、細胞培養液を含む、請求項16~18のいずれか1項に記載の装置。請求項1~11のいずれか1項に記載された方法により得られた、活性化リンパ球。本発明は、細胞の分離および培養を、完全閉鎖系で行うことのできる培養方法システムを開発することを課題とする。本発明の発明者らは、細胞の分離から培養までを完全閉鎖系で行うために、閉鎖系で細胞を含む体液と赤血球凝集剤とを無菌的に混合し、静置することにより赤血球を沈降させて除去し、リンパ球などの細胞を含む層バフィーコート層の液を閉鎖系培養装置に閉鎖的に送液することを含む、閉鎖的にバフィーコート層を分取する方法を提供すること、そしてまた、この様にして得られたバフィーコート層を送液した後、培養を行うことを含む、体液中に含まれる細胞の閉鎖的培養方法を提供すること、またはこれらの方法を行う培養システムおよび培養装置を提供することにより、上記課題を解決した。本発明の方法により、細胞を含む体液を採取から一貫して閉鎖系の条件の下で、処理を行うことができ、結果として閉鎖系でバフィーコート層を分取すること、そしてその得られたバフィーコートを培養することにより体液中に含まれる細胞を閉鎖系で培養する方法を提供することができる。このように、一貫して閉鎖系の下で細胞の採取培養を行うことができることにより、移植に適した無菌でかつマイコプラズマの感染のない、より安全な細胞を提供できるだけではなく、移植前に行わなければならない無菌試験あるいはマイコプラズマ試験を、培養の前または培養と同時に早期に実施することができる。本発明の発明者らは、閉鎖系で細胞を含む体液と赤血球凝集剤とを無菌的に混合し、静置することにより赤血球を沈降させて除去し、リンパ球などの細胞を含む層バフィーコート層の液を閉鎖系培養装置に閉鎖的に送液することを含む、閉鎖的にバフィーコート層を分取する方法を提供することができること、そしてまた、この様にして得られたバフィーコート層を送液した後、培養を行うことを含む、体液中に含まれる細胞の閉鎖的培養方法を提供することができること、を示し、細胞の分離から培養までを完全閉鎖系で行うことを示した。従来技術において、血液または骨髄液などの細胞を含む体液に対して、赤血球凝集剤を加えて静置することにより、赤血球を除去する方法は知られていたが特開2002171965、これまでの方法では、バフィーコートを遠心して、有核細胞を分取する方法が一般的であり、バフィーコートをそのまま培養液に添加して培養を行うという方法は一般に行われていなかった。さらに閉鎖系でバフィーコートを分取し、閉鎖的に培養装置に送液し、細胞の分離から培養までを完全閉鎖系で実施することは行われていなかった。これに対して本願発明においては、閉鎖的条件下において、採取した細胞を含む体液を、赤血球凝集剤と混合し、静置するだけで、有核細胞を含むバフィーコート層が分離できること、そして閉鎖的条件を維持したままバフィーコートのみを培養液に移して閉鎖系において無菌条件を維持したまま得られたバフィーコートの細胞をそのまま培養に供することができることを示した。本発明において、閉鎖系の条件下すなわち、無菌条件下において、細胞を含む体液と赤血球凝集剤とを混合する。本発明において使用する細胞を含む体液は、血液、臍帯血、骨髄液、腹水液または胸水液から選択されるものである。これらの体液に含まれる細胞としては、免疫系の有核細胞を例としてあげることができ、例えば好中球、好塩基球、および好酸球などの白血球、T細胞、B細胞、NK細胞などのリンパ球、そして単球などが存在する。上述した細胞を含む体液と混合する赤血球凝集剤は、細胞を含む体液と混合した場合に、赤血球は沈殿させるが、その他の有核細胞は沈殿させないという特性を有しているものであればどの様なものであってもよいが、細胞を含む体液と赤血球凝集剤とを混合した後、遠心分離を行うことなく、単に静置するだけで有核細胞を分離採取することができる特性を有するものであることが好ましい。本発明において使用することができる赤血球凝集剤としては、デキストラン類、Ficoll類、ヒドロキシエチルセルロースHES類などを例としてあげることができる。赤血球凝集剤としては、デキストラン類、ヒドロキシエチルセルロースHES類がより好ましい。本発明において使用する場合、赤血球凝集剤は、細胞を含む体液と混合した際に、赤血球凝集剤の終濃度が00005~100である場合に、バフィーコートに含まれる有核細胞を特に効率よく回収することができる。本発明においては、赤血球凝集剤の終濃度が01~375である場合に、バフィーコートに含まれる有核細胞をより効率よく回収することができる。本発明の方法は、例えば、注射筒で採血された血液を送液すること、真空採血管で採血された血液を送液すること、輸血バッグで採血された血液を送液すること、骨髄穿孔針を装着したシリンジで採取した骨髄液を送液すること、あるいは採取した臍帯血採取用バッグに採取された臍帯血を送液すること、等が具体的な実施態様として考えられ、それぞれの場合において、赤血球凝集剤が含まれる容器に対して、滅菌したチューブを介して閉鎖系で、上述した体液を送液する。体液サンプルを、赤血球凝集剤が含まれる容器に送液するために、圧力差、ポンプ、重力、等を使用することができる。送液のために圧力差を利用する場合、例えば赤血球凝集剤を含む容器の内圧を減圧しておくことにより、チューブを介して、体液を赤血球凝集剤を含む容器へと移動させることができる。あるいは、細胞を含む体液を収容する容器自体に外部から圧力を加えて、チューブを介して、体液を赤血球凝集剤を含む容器へと移動させることができる。あるいは、送液のためにポンプを使用する場合、送液ポンプを使用して、チューブを通じて、体液を収容する容器から、赤血球凝集剤を含む容器へと体液を移動させることができる。本発明は、上述した方法を実現するための装置もまた、提供することができる。具体的には、採取された細胞を含む体液を収容するための第1の容器、赤血球凝集剤および培養液を収容する第2の容器、第1の容器と第2の容器とを連結する第1の連絡手段、連絡手段を介して第1の容器の血液を第2の容器へと移動させる第1の送液手段、を装着する装置を提供することができる。この装置は、閉鎖系で細胞を含む体液からバフィーコート層を分離するために使用することができる。第1の送液手段としては、圧力差、ポンプ、重力、などを使用することができる。圧力差を使用する場合には、第2の容器の内圧を減圧しておくことが必要である。また、この装置において使用する第1の容器、第2の容器および第1の連絡手段は、滅菌されたものであることが必要である。この装置の具体例を、図1~図3に示す。一例として、図1において、体液として血液を使用し、送液手段としてポンプ15を使用している。血液の入った容器11第1の容器に相当に対して、注射針12を含む連結チューブ13第1の連絡手段に相当を接続し、送液ポンプ15第1の送液手段に相当を使用して、容器11内の血液を、赤血球凝集剤を分注した容器14第2の容器に相当に移動させることにより、血液を赤血球凝集剤と混合した。別の例として、図2において、体液として血液を使用し、送液手段として重力を使用している。血液の入った容器21第1の容器に相当に対して、連結チューブ23第1の連絡手段に相当を接続し、重力第1の送液手段に相当を使用して、容器21内の血液を、赤血球凝集剤を分注した容器25第2の容器に相当に移動させることにより、血液を赤血球凝集剤と混合した。さらに別の例として、図3において、体液として血液を使用し、送液手段として第1の容器に対する外部からの圧縮力を使用している。血液の入った容器31第1の容器に相当、例えば輸血バッグなどに対して、連結チューブ33第1の連絡手段に相当を接続し、第1の容器への圧縮力第1の送液手段に相当を使用して、容器31内の血液を、赤血球凝集剤を分注した容器35第2の容器に相当に移動させることにより、血液を赤血球凝集剤と混合した。この図1~図3の装置を用いて、第2の容器中で細胞を含む体液と赤血球凝集剤とを混合し、静置すると、図4に示すように、下層に赤血球の凝集物41が、そして上層にバフィーコート42がそれぞれ分離した。本発明はまた、閉鎖系で血液から分離されたバフィーコート層を収容する第2の容器、採取したバフィーコートを培養するための第3の容器、第2の容器と第3の容器とを連結する第2の連絡手段、そして第2の連絡手段を介して第2の容器のバフィーコート層を第3の容器へと移動させる第2の送液手段、を装着する装置を提供することができる。この装置は、閉鎖系で細胞を含む体液から分離されたバフィーコート層を、分取するために使用することができる。第2の送液手段としては、圧力差、ポンプ、重力、等を使用することができる。圧力差を使用する場合には、第3の容器の内圧を減圧しておくことが必要である。また、この装置において使用する第2の容器、第3の容器および第2の連絡手段は、滅菌されたものであることが必要である。そして、第3の容器としては、閉鎖系の培養装置としては、特開200558103にある閉鎖系培養フラスコおよび特開2007175028にある培養バッグを用いることができ、そしてその内部には、移動させたバフィーコート層を培養するための細胞培養液を含むものである。第3の容器に対してCD3を固相化しておき、第2の容器から移動させたバフィーコート層を第3の容器中でCD3により直接的に刺激することもできる。この様な構成の容器を使用することにより、単に培養を行うだけでなく、培養を行うタイミングでリンパ球の活性化をも直接的に行うことができる。この装置の態様の具体例を、図5に示す。図5において、図1~図3の容器14、容器25、または容器35中で形成されたバフィーコートを使用し、送液手段としてポンプ54を使用している。分離されたバフィーコートが入った容器53第2の容器に相当に対して、連結チューブ53第2の連絡手段に相当を接続し、送液ポンプ54第2の送液手段に相当を使用して、容器51内のバフィーコートを、細胞培養液を分注した容器55第3の容器に相当に移動させることにより、バフィーコートを分取した。この様にして、閉鎖系の条件下で、活性化リンパ球などの細胞を得ることができる。この細胞は、細菌またはマイコプラズマなどのコンタミネーションを有さない細胞であることを特徴とする。以下、本発明を更に詳細に説明するために、本発明の実施例を示す。実施例1:赤血球凝集剤の検討本実施例は、本発明の方法および装置において使用することができる赤血球凝集剤を検討することを目的として行った。2gのデキストランT500シグマアルドリッチ、および2gのデキストラン70東京化成を生理食塩水大塚製薬に溶解し、120°C20分間オートクレーブ滅菌を行った。6HES40液ニプロおよび6サリンヘス液ヒドロキシエチルデンプン注射液、フレゼニウスカービを生理食塩水で3倍希釈し、各2溶液を作製した。へパリン採血管ニプロで採血した末梢血3mLと作製した各2溶液を等量混合し終濃度1、30分間静置した。デキストランT500およびHES40は赤血球が沈降し、上層に黄色い白血球とリンパ球を含むバフィーコートが形成された。バフィーコート層を赤血球が混入しないように3mL分取した。デキストラン70、およびサリンヘスはさらに30分間、計1時間静置した。バフィーコート層が形成されたデキストラン70から赤血球が混入しないように3mLのバフィーコートを分取した。サリンヘスはバフィーコート層の形成が悪くバフィーコートを分取できなかった。また、末梢血2mLに生理食塩水4mLを加えて3倍希釈した後、3mLのFicoll液リンフォセパールI、免疫生物研究所を分注した15mL遠心管に重層した。Ficoll液に重層した末梢血の入った遠心管をブレーキオフにて400×g、20分間遠心した。中間層Ficollとの境界にできたリンパ球画分を赤血球が混入しないように分取した。分取したリンパ球層を新しい15mL遠心間に移し、生理食塩水を加えて14mLとし、430×g、10分間遠心した。上清を捨て無血清培地SKY2スカイセルサイエンス社4mLに浮遊させた。分取したバフィーコート中の有核細胞数、Ficollで分離してSKY2培地に浮遊させた有核細胞数および全血中の有核細胞数を表1に示した。OKT3を固相化した25cm2活性化フラスコ関根らの方法により作製したに無血清培地5mLを分注し、各バフィーコートを2mLまたは全血1mLを加えた。一方、Ficollで分離し、SKY2培地に浮遊させた有核細胞2mLを活性化フラスコに分注し、SKY2培地3mLを加え計5mLとした。炭酸ガス培養器37°C、5CO2で培養を開始した。培養4日目にSKY2培地5mLを加えた。5日目にSKY2培地15mLを加え、培養を継続した。培養7日目に75mLのSKY2培地を含む225cm2フラスコに25cm2活性化フラスコ中の細胞を全て加え、培養を継続した。11日目にSKY2培地100mLを加え、培養を継続した。14日目に細胞を全て回収し、細胞数を計測した表2。デキストランT500およびHES40では9×108個以上の有核細胞が得られた。デキストラン70では8×108個以上の有核細胞が、Ficollで分離した細胞からは7×108個以上の有核細胞が得られたのに対して、全血を加えた培養では5×108個程度の有核細胞しか得られず、全血では細胞増殖能が低下した。実施例2:赤血球凝集剤濃度の検討本実施例は、実施例1で検討した結果、赤血球凝集剤として良好であったデストランT500およびHES40について、好ましい濃度を検討することを目的として行った。実施例1と同様に作製した6デストランT500および6HES40を生理食塩水で希釈して、1~3濃度液を作製した。各濃度液2mLにヘパリン採血管ニプロで採血した末梢血2mLを加え、転倒混和後、30分間静置し、バフィーコート層を2mL分取した。実施例1と同様に5mLのSKY2培地を含む25cm2活性化フラスコに各バフィーコート2mLを加え14日間の培養を行った。培養終了後有核細胞数を計測した表3。デキストランT500およびHES40は1~3終濃度05~15の範囲で7×108個以上の有核細胞が回収された。実施例3:赤血球凝集剤濃度と細胞数との関係の検討本実施例は、赤血球凝集剤濃度と、使用する細胞数との関係を検討することを目的として行った。実施例1と同様に作製した20デストランT500を生理食塩水で希釈して、25~20濃度液を作製した。また、2デキストランT500を生理食塩水で希釈して00001、0001、001、01、02、03、04および05濃度液を作製した。各濃度液2mLにヘパリン採血管ニプロで採血した末梢血2mLを加え、転倒混和後、30分間静置した。00001から02濃度液はさらに30分間、計1時間静置した。バフィーコート層を分取した。分取したバフィーコートの液量と有核細胞数を表4に示した。回収細胞数が30×106個以上分取できた分離条件のうち02、03、50、75濃度液初濃度およびFicollにより分離した細胞を用いて実施例1と同様に5mLのSKY2培地を含む25cm2活性化フラスコに各バフィーコート2mL02の条件は18mLまたはFicollで回収した細胞を加え14日間の培養を行った。培養終了後有核細胞数を計測した表5。デキストランT500の02~50終濃度01~25の範囲で6×108個以上の有核細胞が回収された。実施例4:採取したバフィーコートの培養本実施例は、本発明の方法により得られたバフィーコートをさらに培養する際の条件を検討することを目的として行った。クリーンベンチ内で、ヘパリンの入った真空採血管テルモ社製VPH100を用いて採血した血液5mLを5mLの2デキストラン生理食塩水を加えた10mLの血清用真空採血管テルモ社製VPP100と注射針テルモ社製NN2070C、延長チューブテルモ社製SFET2022およびロックコネクターテルモ社製TSLC11を介して結合することにより、血液と2デキストラン生理食塩水の1:1の混合液を作製した。30分間静置すると赤血球が沈降し採血管の上部に淡黄色の層が形成された。上部より300mL溶の活性化バックに接続した注射針テルモ社製NN2070Cを差し込みペリスタポンプにより5mLのバフィーコート層を無血清培養液50mLの入った活性化バッグに送り込んだ。チューブシーラーテルモ社製AC155を用いて活性化バッグに連活したチューブをシールし、切り離す。この操作を繰り返し計20mLのバフィーコートを活性化バックに送り込む。バフィーコートと培養液を良く混ぜ合わせた後、37°Cの炭酸ガス培養器内で培養を開始する。4日後に無血清培養液の入ったバッグと活性化バックを無菌接合器テルモ社製、TSCD202により結合し、50mLの培養液を追加する。チューブシーラーでシール後、2つのバッグを切り離す。培養液を追加した活性化バッグを37°Cの炭酸ガス培養器内に戻し培養を継続する。翌日同様に活性化バッグと無血清培地の入ったバッグを連結し、無血清培養液150mLを追加する。培養液を追加した活性化バッグを37°Cの炭酸ガス培養器内に戻し培養を継続する。2日後に750mLの無血清培養液の入った培養バッグと活性化バッグを連結し、活性化バッグ内の培養液を750mLの入った培養バッグに全量注入した。全量1000mLの培養バッグを37°Cの炭酸ガス培養器内で4日間培養した。1000mLの培養バッグを新鮮な培養液1000mLの入った培養バッグと接合し、2つのバッグの培養液を均一に混合した。2つのバッグの培養液量がそれぞれ1000mLとした後、チューブシーラーでシール後に2つのバッグに切り離した。2つのバッグを37°Cの炭酸ガス培養器内でさらに3日間培養した。細胞が均一に分布するように培養液を撹拌した後、サンプリングポートよりそれぞれ10mLの細胞浮遊液を採取した。バッグ1の細胞密度は336×106細胞mL、バッグ2の細胞密度は320×106細胞mLであり、総細胞数は656×109細胞であった。なお、本実施例で用いた300mL用の活性化バッグは50μgの抗CD3抗体OKT3を添加した10mLの生理食塩水大塚製薬をサンプリングポートより21Gの注射針を取り付けた注射筒を用いて300mL用培養バッグコージンバイオ社製TAZETTAF内に注入した。バッグ内に無菌空気を注射筒で注入し、バッグを膨らませた状態で2時間室温にて振騰し、培養バッグ片面にOKT3を固相化した。生理食塩水1Lを分注した1L容の分離バッグニプロとOKT固相化バッグを無菌接合機で接合し、300mLの生理食塩水をOKT3固相化培養バッグに加えた。バッグ内の液を均一になるように撹拌し、5分間静置した。5分後に活性化バッグのもう一方のチューブと空の分離バッグを接合し、活性化バッグ内の液を廃液用の分離バッグに移した。チューブの中間部分を鉗子で挟み、液を止めた。この操作をさらに2回繰り返した。チューブシーラーによりシールした後、3つのバッグを切り離した。活性化バッグに無血清培養液50mLを注入することにより、活性化培養用の活性化バッグを作製した。実施例5:採取したバフィーコートの培養本実施例は、本発明の方法により得られたバフィーコートをさらに培養する際の別の条件を検討することを目的として行った。5mLの2デキストラン生理食塩水を加えた5本の10mLの血清用真空採血管テルモ社製VPP100に30mLの注射筒で採血した血液5mL無菌的に注入した。転倒混和後、30分間静置した。計20mLのバフィーコート層を実施例4と同様に50mLのSKY2培地を分注したOKT3固相化300mL容培養バック注入し後、2Lまで培養を継続した。2週間後に回収された細胞数は764×109細胞であった。