"抗生物質、副腎皮質ホルモン、ステロイド系抗炎症剤、抗コレステロール剤、及び高血圧薬から選択される1種類以上の増産剤の存在条件下でイソプレノイド産生植物のカルスを培養する工程を含む、イソプレノイドの製造方法。Lovastatininsensitive1遺伝子によりコードされるペンタトリコペプチド含有タンパク質の機能の阻害、呼吸鎖関連酵素の機能の阻害、カリウムチャネル開口、及び電子伝達阻害から選択される活性を有する1種類以上の増産剤の存在条件下でイソプレノイド産生植物のカルスを培養する工程を含む、イソプレノイドの製造方法。IPPisomerase遺伝子発現量を減少させる活性、及びHMG-CoAReductase遺伝子発現量を増加させる活性から選択される活性を有する1種類以上の増産剤の存在条件下でイソプレノイド産生植物のカルスを培養する工程を含む、イソプレノイドの製造方法。増産剤が、水又は水溶性媒体に溶解又は分散させたものである、請求項1~3のいずれかに記載のイソプレノイドの製造方法。イソプレノイド産生植物がパラゴムノキHeveabrasiliensis、グアユール、及びロシアンタンポポから選択される、請求項1~4のいずれかに記載のイソプレノイドの製造方法。カルスの培養が、イソプレノイド産生植物の組織片を植物生長ホルモン、増産剤、及び炭素源を含む誘導培地中で培養することにより行われる、請求項1~5のいずれかに記載のイソプレノイドの製造方法。イソプレノイド産生植物の組織片からカルスを誘導した後、カルスを培養することにより、カルスによりイソプレノイドを生合成する請求項1~6のいずれかに記載のイソプレノイドの製造方法。抗生物質、副腎皮質ホルモン、ステロイド系抗炎症剤、抗コレステロール剤、及び高血圧薬から選択される1種類以上の増産剤の存在条件下で培養して得られる、イソプレノイド産生植物のカルス。Lovastatininsensitive1遺伝子によりコードされるペンタトリコペプチド含有タンパク質の機能の阻害、呼吸鎖関連酵素の機能の阻害、カリウムチャネル開口、及び電子伝達阻害から選択される活性を有する1種類以上の増産剤の存在条件下で培養して得られる、イソプレノイド産生植物のカルス。IPPisomerase遺伝子発現量を減少させる活性、及びHMG-CoAReductase遺伝子発現量を増加させる活性から選択される活性を有する1種類以上の増産剤の存在条件下で培養して得られる、イソプレノイド産生植物のカルス。請求項1~7のいずれかに記載の製造方法で製造されたイソプレノイド。本発明は、前記課題を解決し、パラゴムノキの成木に頼らない安定的なイソプレノイドの製造方法、該製造方法により得られるイソプレノイドを提供することを目的とする。また、イソプレノイドを製造可能な新規なカルス、該カルスの誘導方法、該カルスの培養方法を提供することを目的とする。従来から、完全な植物体でなくとも、カルスなどの未分化細胞を用いて、一部の二次代謝物を生合成できることは知られていた。天然ゴムイソプレノイドも二次代謝物ではあるが、乳管細胞という特殊な細胞により生合成されることが知られており、乳管細胞以外の細胞例えば、カルスでは生合成できないものと考えられていた。本発明者らは、鋭意検討した結果、イソプレノイド産生植物の組織片から誘導したカルスにより、イソプレノイド天然ゴムを生合成できることを見出した。さらに、カルスに増産剤を適用することにより、カルスによるイソプレノイド産生能を向上させられることを見出し、本発明を完成させた。すなわち、本発明は、抗生物質、副腎皮質ホルモン、ステロイド系抗炎症剤、抗コレステロール剤、及び高血圧薬から選択される1種類以上の増産剤の存在条件下でイソプレノイド産生植物のカルスを培養する工程を含む、イソプレノイドの製造方法に関する。また、本発明は、Lovastatininsensitive1遺伝子によりコードされるペンタトリコペプチド含有タンパク質の機能の阻害、呼吸鎖関連酵素の機能の阻害、カリウムチャネル開口、及び電子伝達阻害から選択される活性を有する1種類以上の増産剤の存在条件下でイソプレノイド産生植物のカルスを培養する工程を含む、イソプレノイドの製造方法に関する。また、本発明は、IPPisomerase遺伝子発現量を減少させる活性、及びHMG-CoAReductase遺伝子発現量を増加させる活性から選択される活性を有する1種類以上の増産剤の存在条件下でイソプレノイド産生植物のカルスを培養する工程を含む、イソプレノイドの製造方法に関する。増産剤が、水又は水溶性媒体に溶解又は分散させたものであることが好ましい。イソプレノイド産生植物がパラゴムノキHeveabrasiliensis、グアユール、及びロシアンタンポポから選択されるものであることが好ましい。カルスの培養が、イソプレノイド産生植物の組織片を植物生長ホルモン、増産剤、及び炭素源を含む誘導培地中で培養することにより行われることが好ましい。イソプレノイド産生植物の組織片からカルスを誘導した後、カルスを培養することにより、カルスによりイソプレノイドを生合成することが好ましい。また、本発明は、抗生物質、副腎皮質ホルモン、ステロイド系抗炎症剤、抗コレステロール剤、及び高血圧薬から選択される1種類以上の増産剤の存在条件下で培養して得られる、イソプレノイド産生植物のカルスに関する。また、本発明は、Lovastatininsensitive1遺伝子によりコードされるペンタトリコペプチド含有タンパク質の機能の阻害、呼吸鎖関連酵素の機能の阻害、カリウムチャネル開口、及び電子伝達阻害から選択される活性を有する1種類以上の増産剤の存在条件下で培養して得られる、イソプレノイド産生植物のカルスに関する。また、本発明は、IPPisomerase遺伝子発現量を減少させる活性、及びHMG-CoAReductase遺伝子発現量を増加させる活性から選択される活性を有する1種類以上の増産剤の存在条件下で培養して得られる、イソプレノイド産生植物のカルスに関する。また、本発明は、上記の製造方法で製造されたイソプレノイドに関する。本発明の方法により、イソプレノイド産生植物の成木に頼らず、安定的にイソプレノイドを製造することが可能となる。本発明は、抗生物質、副腎皮質ホルモン、ステロイド系抗炎症剤、抗コレステロール剤、及び高血圧薬から選択される1種類以上の増産剤の存在条件下でイソプレノイド産生植物のカルスを培養する工程を含む、イソプレノイドの製造方法に関する。また、本発明は、Lovastatininsensitive1遺伝子によりコードされるペンタトリコペプチド含有タンパク質の機能の阻害、呼吸鎖関連酵素の機能の阻害、カリウムチャネル開口、及び電子伝達阻害、から選択される活性を有する1種類以上の増産剤の存在条件下でイソプレノイド産生植物のカルスを培養する工程を含む、イソプレノイドの製造方法に関する。また、本発明は、IPPisomerase遺伝子発現量を減少させる活性、及びHMG-CoAReductase遺伝子発現量を増加させる活性から選択される活性を有する1種類以上の増産剤の存在条件下でイソプレノイド産生植物のカルスを培養する工程を含む、イソプレノイドの製造方法に関する。イソプレノイドは、イソプレン単位C5H8で構成された重合体の総称である。イソプレノイドとしては、例えばモノテルペンC10、セスキテルペンC15、ジテルペンC20、セスタテルペンC25、トリテルペンC30、テトラテルペンC40、天然ゴムなどの重合体が挙げられる。本発明のイソプレノイドの製造方法は、イソプレノイド産生植物の組織片からカルスを誘導し、抗生物質、副腎皮質ホルモン、ステロイド系抗炎症剤、抗コレステロール剤、及び高血圧薬から選択される1種類以上の増産剤の存在条件下、Lovastatininsensitive1遺伝子によりコードされるペンタトリコペプチド含有タンパク質の機能の阻害、呼吸鎖関連酵素の機能の阻害、カリウムチャネル開口、及び電子伝達阻害から選択される活性を有する1種類以上の増産剤の存在条件下、又は、IPPisomerase遺伝子発現量を減少させる活性、及びHMG-CoAReductase遺伝子発現量を増加させる活性から選択される活性を有する1種類以上の増産剤の存在条件下で、カルスによりイソプレノイドを生合成する製造方法である。具体的には、イソプレノイド産生植物の組織片からカルスを誘導し、前記増産剤の存在条件下でカルスを培養することにより、イソプレノイドを生合成すればよい。誘導したカルスをそのまま培養してイソプレノイドを製造することとしてもよいが、より多量のイソプレノイドが得られるという理由から、誘導したカルスをまず増殖させ、増殖させたカルスによりイソプレノイドを製造することが好ましい。具体的には、イソプレノイド産生植物の組織片を植物生長ホルモン及び炭素源を含む誘導培地中で培養することによりカルスを誘導する誘導工程と、カルスを生育培地中で培養して増殖させる増殖工程と、増殖工程により増殖させたカルスを上記増産剤を含む生産培地で培養し、カルスによりイソプレノイドを生合成する生産工程とを含む製造方法が好ましい。なお、増殖工程及び生産工程において液体培養を行う場合には、カルスの増殖が比較的速いため、増殖工程と生産工程を明確に分けずに、1つの工程でカルスを増殖させつつ、カルスによりイソプレノイドを生合成することとしてもよい。誘導工程誘導工程では、例えば、イソプレノイド産生植物の組織片を植物生長ホルモン及び炭素源を含む誘導培地中で培養することによりカルスを誘導する。イソプレノイド産生植物としては、イソプレノイドを産生可能な植物であれば特に限定されず、例えば、パラゴムノキHeveabrasiliensis等のHevea属;ノゲシSonchusoleraceus、オニノゲシSonchusasper、ハチジョウナSonchusbrachyotus等のSonchus属;セイタカアワダチソウSolidagoaltissima、アキノキリンソウSolidagovirgaureasubsp.asiatica、ミヤマアキノキリンソウSolidagovirgaureasubsp.leipcarpa、キリガミネアキノキリンソウSolidagovirgaureasubsp.leipcarpaf.paludosa、オオアキノキリンソウSolidagovirgaureasubsp.gigantea、オオアワダチソウSolidagogiganteaAit.var.leiophyllaFernald等のSolidago属;ヒマワリHelianthusannuus、シロタエヒマワリHelianthusargophyllus、ヘリアンサスアトロルベンスHelianthusatrorubens、ヒメヒマワリHelianthusdebilis、コヒマワリHelianthusdecapetalus、ジャイアントサンフラワーHelianthusgiganteus等のHelianthus属;タンポポTaraxacum、エゾタンポポTaraxacumvenustumH.Koidz、シナノタンポポTaraxacumhondoenseNakai、カントウタンポポTaraxacumplatycarpumDahlst、カンサイタンポポTaraxacumjaponicum、セイヨウタンポポTaraxacumofficinaleWeber等のTaraxacum属;イチジクFicuscarica、インドゴムノキFicuselastica、オオイタビFicuspumilaL.、イヌビワFicuserectaThumb.、ホソバムクイヌビワFicusampelasBurm.f.、コウトウイヌビワFicusbenguetensisMerr.、ムクイヌビワFicusirisanaElm.、ガジュマルFicusmicrocarpaL.f.、オオバイヌビワFicussepticaBurm.f.、ベンガルボダイジュFicusbenghalensis等のFicus属;グアユールParheniumargentatum、レタスLactucaserriola、ベンガルボダイジュ等が挙げられる。なかでも、Helianthus属に属する植物であることが好ましく、なかでも、Hevea属、Sonchus属、Solidago属、Helianthus属、Taraxacum属、Ficus属からなる群より選択される少なくとも1種の属に属する植物であることが好ましく、パラゴムノキ、ノゲシ、セイタカアワダチソウ、ヒマワリ、タンポポ、及びイチジクからなる群より選択される少なくとも1種であることがより好ましい。組織片としては、特に限定されないが、葉、茎、根、芽、花弁、子葉、胚軸、葯、及び種子からなる群より選択される少なくとも1種であることが好ましい。なかでも、葉、茎がより好ましい。誘導工程では、まず、イソプレノイド産生植物の組織片の表面を洗浄する。組織片として植物の内部にある組織を利用する場合は、例えば、磨き粉で洗浄しても良いが、界面活性剤を約0.1含む水で洗浄してもよい。葉などを利用する場合は、軟らかいスポンジで表面を洗浄することが好ましい。次に、組織片を殺菌又は滅菌する。殺菌又は滅菌は、周知の殺菌剤、滅菌剤を用いて行うことができるが、エタノール、塩化ベンザルコニウム、次亜塩素酸ナトリウム水溶液が好ましい。次に、殺菌又は滅菌した組織片を植物生長ホルモン及び炭素源を含む誘導培地中で培養することにより、カルスの誘導を行う。なお、誘導培地は、液体であっても固体であってもよいが、培地上に置床して培養することで、カルス化しやすいため、固体培養が好ましい。また、誘導培地が液体培地である場合には、静置培養を行ってもよく、振とう培養を行ってもよい。植物生長ホルモンとしては、例えば、オーキシン系植物ホルモン及び/又はサイトカイニン系植物ホルモンが挙げられる。オーキシン系植物ホルモンとしては、2,4-ジクロロフェノキシ酢酸、ナフタレン酢酸、インドール酪酸、インドール酢酸、インドールプロピオン酸、クロロフェノキシ酢酸、ナフトキシ酢酸、フェニル酢酸、2,4,5-トリクロロフェノキシ酢酸、パラクロロフェノキシ酢酸、2-メチル-4-クロロフェノキシ酢酸、4-フルオロフェノキシ酢酸、2-メトキシ-3,6-ジクロロ安息香酸、2-フェニル酸、ピクロラム、ピコリン酸等が挙げられる。なかでも、2,4-ジクロロフェノキシ酢酸、ナフタレン酢酸、インドール酪酸が好ましく、2,4-ジクロロフェノキシ酢酸、ナフタレン酢酸がより好ましく、ナフタレン酢酸が更に好ましい。サイトカイニン系植物ホルモンとしては、ベンジルアデニン、カイネチン、ゼアチン、ベンジルアミノプリン、イソペンチニルアミノプリン、チジアズロン、イソペンテニルアデニン、ゼアチンリポシド、ジヒドロゼアチン等が挙げられる。なかでも、ベンジルアデニン、カイネチン、ゼアチンが好ましく、ベンジルアデニン、カイネチンがより好ましく、ベンジルアデニンが更に好ましい。炭素源としては、特に限定されず、スクロース、グルコース、トレハロース、フルクトース、ラクトース、ガラクトース、キシロース、アロース、タロース、グロース、アルトロース、マンノース、イドース、アラビノース、アピオース、マルトース等の糖類が挙げられる。また、エリスリトール、キシリトール、マンニトール、ソルビトール、ラクチトール等の糖アルコールであってもよい。なかでもスクロース、グルコースが好ましく、スクロースがより好ましい。誘導培地としては、Whiteの培地植物細胞工学入門学会出版センターp20~p36に記載、Hellerの培地HellerR,Bot.Biol.Veg.Paris141-2231953、SH培地SchenkとHildebrandtの培地、MS培地MurashigeとSkoogの培地植物細胞工学入門学会出版センターp20~p36に記載、LS培地LinsmaierとSkoogの培地植物細胞工学入門学会出版センターp20~p36に記載、Gamborg培地、B5培地植物細胞工学入門学会出版センターp20~p36に記載、MB培地、WP培地WoodyPlant:木本類用等の基本培地や、該基本培地の組成に変更を加えた改変基本培地等のベースとなる培地に植物生長ホルモンを加えたものを使用すればよい。なかでも、MS培地、B5培地、WP培地に植物生長ホルモンを加えたものが好ましい。また、カルスの維持および細胞分裂の促進に適しているという理由から、オーキシン系植物ホルモン及びサイトカイニン系植物ホルモンを含むことが好ましい。誘導培地は、ジャスモン酸、及びモノテルペン化合物からなる群より選択される少なくとも1種を含んでもよい。モノテルペン化合物としては、D-リモネン、α-ピネン、β-ピネン、l-メントール、ゲラニオール、カラン、ピナン、ミルセン、オシメン、コスメン等が挙げられる。なかでも、D-リモネン、α-ピネンが好ましい。誘導培地を固体培地とする場合、固形化剤を使用して培地を固体にすればよい。固形化剤としては、特に限定されず、寒天、ゲランガム、アガロース、ゲルライト、ゼラチン、シリカゲル等が挙げられる。好適な誘導培地の組成及び培養条件は、植物種により異なり、また培地が液体培地であるか固体培地であるかによっても異なるが、通常は以下の組成である。誘導培地中の窒素濃度は、好ましくは0mM以上、より好ましくは1×10-3mM以上である。該窒素濃度は、好ましくは100mM以下、より好ましくは50mM以下である。誘導培地中の微量無機塩類の濃度は、好ましくは0mM以上、より好ましくは1×10-3mM以上である。微量無機塩類の濃度は、好ましくは2mM以下、より好ましくは0.23mM以下である。なお、微量無機塩類とは、ホウ素、マンガン、亜鉛、銅、モリブデン、塩素、コバルト、チタン、バナジウム、アルミニウム、ケイ素等の培地に少量含有させる無機塩類を意味する。すなわち、微量無機塩類には、カルシウム、マグネシウム、カリウム等の主要無機塩類培地に多量に含めなければ培養が成立しない無機塩類は含まれない。上記微量無機塩類のなかでも、ホウ素、マンガン、亜鉛が好ましく、ホウ素、マンガン、亜鉛の合計濃度が上記微量無機塩類の好ましい濃度範囲内であることが好ましい。誘導培地中の炭素源の濃度は、好ましくは0.1質量以上、より好ましくは1質量以上である。該炭素源の濃度は、好ましくは10質量以下、より好ましくは6質量以下、更に好ましくは3質量以下である。なお、本明細書において、炭素源の濃度とは、糖類の濃度を意味する。誘導培地中のカルシウムイオン濃度は、好ましくは0mM以上、より好ましくは1×10-5mM以上、更に好ましくは0.1mM以上である。該カルシウムイオン濃度は、好ましくは10mM以下、より好ましくは3mM以下である。誘導培地中のオーキシン系植物ホルモンの濃度は、好ましくは0mg/l以上、より好ましくは1×10-3mg/l以上、更に好ましくは0.2mg/l以上である。該オーキシン系植物ホルモンの濃度は、好ましくは20mg/l以下、より好ましくは10mg/l以下である。誘導培地中のサイトカイニン系植物ホルモンの濃度は、好ましくは0mg/l以上、より好ましくは1×10-3mg/l以上、更に好ましくは0.2mg/l以上である。該サイトカイニン系植物ホルモンの濃度は、好ましくは15mg/l以下、より好ましくは10mg/l以下である。誘導培地中のジャスモン酸の濃度は、好ましくは0質量以上、より好ましくは1×10-6質量以上である。該ジャスモン酸の濃度は、好ましくは0.5質量以下、より好ましくは0.3質量以下である。誘導培地中のモノテルペン化合物の濃度は、好ましくは0質量以上、より好ましくは1×10-6質量以上である。該モノテルペン化合物の濃度は、好ましくは0.5質量以下、より好ましくは0.3質量以下である。誘導培地のpHは、4.0~10.0が好ましく、5.0~6.5がより好ましく、5.6~5.8が更に好ましい。培養温度は、0~40°Cが好ましく、23~30°Cがより好ましい。培養は、暗所で行っても明所で行ってもよいが、照度は、0~100000lxが好ましく、0~0.1lxがより好ましい。なお、本明細書において、固体培地のpHは、固形化剤を除く全成分を添加した培地のpHを意味する。また、本明細書において、暗所とは、照度が0~0.1lxであることを意味し、明所とは、照度が0.1lxを超えていることを意味する。固体培地の場合、誘導培地中の固形化剤の濃度は、好ましくは0.1質量以上、より好ましくは0.2質量以上である。該固形化剤の濃度は、好ましくは2質量以下、より好ましくは1.1質量以下である。以上のように、殺菌又は滅菌した組織片を上記誘導培地中で培養することにより、カルスの誘導を行うことが可能である。なお、イソプレノイド産生植物の組織片を上記誘導培地中で培養し、上記誘導培地で継代培養を繰り返すことにより、イソプレノイド産生植物の組織片から誘導された細胞100質量中のカルスの割合を20質量以上好ましくは60質量以上、より好ましくは90質量以上とすることが可能となり、カルスを効率的、安定的に誘導できる。この誘導工程により誘導されたカルスは、次の増殖工程に使用される。なお、イソプレノイド産生植物好ましくはHevea属に属する植物特に、パラゴムノキ、Sonchus属に属する植物特に、ノゲシ、Solidago属に属する植物特に、セイタカアワダチソウ、Helianthus属に属する植物特に、ヒマワリ、Taraxacum属に属する植物特に、タンポポ、Ficus属に属する植物特に、イチジクの組織片から誘導されたカルスは、イソプレノイドの製造に優れている。本発明では、誘導されたカルスの遺伝子を組み替えてもよい。組み換え遺伝子の導入方法は一般的に用いられているものを、通常知られた条件で使用すればよく、例えば、プロトプラスト法、パーティクルガン法、アグロバクテリウム法以上生物化学実験法41植物細胞工学入門1998年9月1日、学会出版センター、第255頁~326頁,植物バイオテクノロジー2009年5月25日、幸書房、第130頁~136頁などがあるが、これらに限らない。増殖工程増殖工程では、例えば、誘導工程により誘導されたカルス上述の方法等により遺伝子が組み替えられていてもよいを生育培地中で培養して増殖させる。なお、生育培地は、液体であっても固体であってもよい。また、生育培地が液体培地である場合には、静置培養を行ってもよく、振とう培養を行ってもよい。生育培地としては、Whiteの培地、Hellerの培地、SH培地SchenkとHildebrandtの培地、MS培地MurashigeとSkoogの培地、LS培地LinsmaierとSkoogの培地、Gamborg培地、B5培地、MB培地、WP培地WoodyPlant:木本類用等の基本培地や、該基本培地の組成に変更を加えた改変基本培地等のベースとなる培地に必要に応じて植物生長ホルモンを加えたものを使用すればよい。なかでも、MS培地、B5培地、WP培地に植物生長ホルモンを加えたものが好ましい。植物生長ホルモン、炭素源としては、上記誘導培地と同様のものが好適に使用できる。なお、生育培地と誘導培地の組成が同一であってもよい。また、カルスの維持および細胞分裂の促進に適しているという理由から、オーキシン系植物ホルモン及びサイトカイニン系植物ホルモンを含むことが好ましい。生育培地は、ジャスモン酸、モノテルペン化合物、及び糖アルコールからなる群より選択される少なくとも1種を含んでもよい。なかでも、糖アルコールが好ましいが必須成分ではない。モノテルペン化合物としては、D-リモネン、α-ピネンが好ましく、D-リモネンがより好ましい。糖アルコールとしては、上述のエリスリトール、キシリトール、マンニトール、ソルビトール、ラクチトール等が挙げられるが、なかでも、エリスリトールが好ましい。生育培地が固体培地の場合、上記誘導培地の場合と同様に、固形化剤を使用して培地を固体にすればよい。好適な生育培地の組成及び培養条件は、植物種により異なり、また培地が液体培地であるか固体培地であるかによっても異なるが、通常は以下の組成である。生育培地中のジャスモン酸の濃度は、好ましくは0質量以上、より好ましくは0.001質量以上である。該ジャスモン酸の濃度は、好ましくは1質量以下、より好ましくは0.3質量以下である。生育培地中のモノテルペン化合物の濃度は、好ましくは0質量以上、より好ましくは0.01質量以上、更に好ましくは0.05質量以上、特に好ましくは0.10質量以上である。該モノテルペン化合物の濃度は、好ましくは1質量以下、より好ましくは0.75質量以下、更に好ましくは0.50質量以下、特に好ましくは0.30質量以下である。生育培地中の糖アルコールの濃度は、好ましくは0質量以上、より好ましくは0.01質量以上、更に好ましくは0.05質量以上、特に好ましくは0.20質量以上、最も好ましくは0.40質量以上である。該糖アルコールの濃度は、好ましくは1質量以下、より好ましくは0.75質量以下、更に好ましくは0.60質量以下である。生育培地中の窒素濃度は、好ましくは0mM以上、より好ましくは1×10-3mM以上である。該窒素濃度は、好ましくは100mM以下、より好ましくは55mM以下である。生育培地中の微量無機塩類の濃度は、好ましくは0mM以上、より好ましくは1×10-3mM以上である。微量無機塩類の濃度は、好ましくは2mM以下、より好ましくは0.23mM以下である。生育培地中の炭素源の濃度は、好ましくは0.1質量以上、より好ましくは1質量以上である。該炭素源の濃度は、好ましくは10質量以下、より好ましくは6質量以下、更に好ましくは4質量以下である。生育培地が液体培地の場合には、炭素源の濃度が2~6質量であることが更に好ましい。生育培地中のカルシウムイオン濃度は、好ましくは0mM以上、より好ましくは1×10-5mM以上である。該カルシウムイオン濃度は、好ましくは10mM以下、より好ましくは4mM以下、更に好ましくは0.5mM以下である。生育培地が液体培地の場合には、カルシウムイオン濃度が1×10-5~3mMであることが更に好ましい。生育培地中のオーキシン系植物ホルモンの濃度は、好ましくは0mg/l以上、より好ましくは1×10-3mg/l以上、更に好ましくは0.5mg/l以上である。該オーキシン系植物ホルモンの濃度は、好ましくは20mg/l以下、より好ましくは6mg/l以下、更に好ましくは2mg/l以下、特に好ましくは1.2mg/l以下である。生育培地が液体培地の場合には、オーキシン系植物ホルモンの濃度が1×10-3~15mg/lであることが更に好ましい。生育培地中のサイトカイニン系植物ホルモンの濃度は、好ましくは0mg/l以上、より好ましくは1×10-3mg/l以上、更に好ましくは1.5mg/l以上である。該サイトカイニン系植物ホルモンの濃度は、好ましくは15mg/l以下、より好ましくは3mg/l以下、更に好ましくは2.5mg/l以下である。生育培地が液体培地の場合には、サイトカイニン系植物ホルモンの濃度が1×10-3~10mg/lであることが好ましい。生育培地のpHは、4.0~10.0が好ましく、5.0~6.5がより好ましく、固体培地の場合には、5.6~5.8が更に好ましく、液体培地の場合には5.6~5.8が更に好ましい。培養温度は、0~40°Cが好ましく、23~36°Cがより好ましい。なお、生育培地が液体培地の場合には、培養温度が23~30°Cであることが更に好ましい。培養は、暗所で行っても明所で行ってもよいが、照度は、0~100000lxが好ましい。なお、液体培養の場合には、暗所で培養を行うことが好ましい。固体培地の場合、生育培地中の固形化剤の濃度は、好ましくは0.1質量以上、より好ましくは0.2質量以上である。該固形化剤の濃度は、好ましくは2質量以下、より好ましくは1.1質量以下である。以上のように、増殖工程では、カルスを上記生育培地中で培養することにより、カルスを増殖させることが可能である。なお、イソプレノイド産生植物のカルスを上記生育培地中で培養することにより、4週間当たりの質量基準のカルスの生長率を2倍以上好ましくは2.5倍以上とすることが可能となり、カルスを効率的、安定的に生育できる。4週間当たりの質量基準のカルスの生長率は、実施例に記載の方法により算出できる。この増殖工程により増殖させたカルスは、次の生産工程に使用される。なお、増殖工程では、カルスの増殖と共にイソプレノイドの生合成を行ってもよいし、イソプレノイドの生合成は行わずに、カルスの増殖のみを行ってもよい。これは、生育培地の組成や増殖工程の培養条件を適宜変更することにより制御可能である。生産工程生産工程では、例えば、増殖工程により増殖させたカルスを上記増産剤を含む生産培地で培養し、カルスによりイソプレノイドを生合成する。なお、生産培地は、液体であっても固体であってもよい。また、生産培地が液体培地である場合には、静置培養を行ってもよく、振とう培養を行ってもよい。生産培地としては、Whiteの培地、Hellerの培地、SH培地SchenkとHildebrandtの培地、MS培地MurashigeとSkoogの培地、LS培地LinsmaierとSkoogの培地、Gamborg培地、B5培地、MB培地、WP培地WoodyPlant:木本類用等の基本培地や、該基本培地の組成に変更を加えた改変基本培地等のベースとなる培地に必要に応じて植物生長ホルモンを加えたものを使用すればよい。なかでも、MS培地、B5培地、WP培地に植物生長ホルモンを加えたものが好ましい。植物生長ホルモン、炭素源としては、上記誘導培地と同様のものが好適に使用できる。なお、生産培地と、誘導培地及び/又は生育培地の組成が同一であってもよい。また、カルスの維持及び細胞分裂の促進に適しているという理由から、オーキシン系植物ホルモン及びサイトカイニン系植物ホルモンを含むことが好ましい。生産培地は、イソプレノイドの生産を促すという理由から、ジャスモン酸、及びモノテルペン化合物からなる群より選択される少なくとも1種を含むことが好ましいが、これらは必須成分ではない。モノテルペン化合物を含む場合、D-リモネン、α-ピネンが好ましく、D-リモネンがより好ましい。生産培地が固体培地の場合、上記誘導培地の場合と同様に、固形化剤を使用して培地を固体にすればよい。好適な生産培地の組成及び培養条件は、植物種により異なり、また培地が液体培地であるか固体培地であるかによっても異なるが、通常は以下の組成である。生産培地中の窒素濃度は、好ましくは0mM以上、より好ましくは1×10-3mM以上、更に好ましくは7.5mM以上である。該窒素濃度は、好ましくは100mM以下、より好ましくは50mM以下である。生産培地中の微量無機塩類の濃度は、好ましくは0mM以上、より好ましくは1×10-3mM以上である。微量無機塩類の濃度は、好ましくは2mM以下、より好ましくは0.23mM以下である。生産培地中の炭素源の濃度は、好ましくは0.1質量以上、より好ましくは1質量以上である。該炭素源の濃度は、好ましくは10質量以下、より好ましくは6質量以下、更に好ましくは3質量以下である。生産培地が液体培地の場合には、炭素源の濃度が2~6質量であることが更に好ましい。生産培地中のカルシウムイオン濃度は、好ましくは0mM以上、より好ましくは1×10-5mM以上、更に好ましくは0.5mM以上である。該カルシウムイオン濃度は、好ましくは10mM以下、より好ましくは4mM以下である。生産培地が液体培地の場合には、カルシウムイオン濃度が1×10-5~3mMであることが更に好ましい。生産培地中のオーキシン系植物ホルモンの濃度は、好ましくは0mg/l以上、より好ましくは1×10-3mg/l以上である。該オーキシン系植物ホルモンの濃度は、好ましくは20mg/l以下、より好ましくは6mg/l以下である。生産培地が液体培地の場合には、オーキシン系植物ホルモンの濃度が1×10-3~15mg/lであることが好ましい。生産培地中のサイトカイニン系植物ホルモンの濃度は、好ましくは0mg/l以上、より好ましくは1×10-3mg/l以上、更に好ましくは0.1mg/l以上である。該サイトカイニン系植物ホルモンの濃度は、好ましくは15mg/l以下、より好ましくは3mg/l以下である。生産培地が液体培地の場合には、サイトカイニン系植物ホルモンの濃度が1×10-3~10mg/lであることが好ましい。生産培地中のジャスモン酸の濃度は、好ましくは0質量以上、より好ましくは0.001質量以上である。該ジャスモン酸の濃度は、好ましくは1質量以下、より好ましくは0.3質量以下である。生産培地中のモノテルペン化合物の濃度は、好ましくは0質量以上、より好ましくは0.01質量以上、更に好ましくは0.05質量以上である。該モノテルペン化合物の濃度は、好ましくは1質量以下、より好ましくは0.3質量以下である。生産培地のpHは、4.0~10.0が好ましく、5.0~6.5がより好ましく、固体培地の場合には5.6~5.8が更に好ましく、液体培地の場合には5.6~5.8が更に好ましい。培養温度は、0~40°Cが好ましく、23~36°Cがより好ましい。なお、生産培地が液体培地の場合には、培養温度が23~30°Cであることが更に好ましい。培養は、暗所で行っても明所で行ってもよいが、照度は、0~100000lxが好ましく、0~0.1lxがより好ましい。なお、液体培養の場合には、暗所で培養を行うことが好ましい。固体培地の場合、生産培地中の固形化剤の濃度は、好ましくは0.1質量以上、より好ましくは0.2質量以上である。該固形化剤の濃度は、好ましくは2質量以下、より好ましくは1.1質量以下である。増産剤増産剤は、抗生物質、副腎皮質ホルモン、ステロイド系抗炎症剤、抗コレステロール剤、及び高血圧薬から選択される。或いは、増産剤は、Lovastatininsensitive1遺伝子によりコードされるペンタトリコペプチド含有タンパク質の機能の阻害、呼吸鎖関連酵素の機能の阻害、カリウムチャネル開口、及び電子伝達阻害、から選択される活性を有する。イソプレノイドはメバロン酸経路と非メバロン酸経路の2種の経路により合成されることが一般に良く知られている。これらの経路は、ミトコンドリアにある呼吸鎖複合体の調節により制御を受けるので、前記増産剤を使用することにより、イソプレノイド産生能を向上させることができる。或いは、増産剤は、IPPisomerase遺伝子発現量を減少させる活性、及びHMG-CoAReductase遺伝子以下HMGRと略発現量を増加させる活性、から選択される活性を有する。HMG-CoAReductase遺伝子産物はメバロン酸経路における主要酵素を制御するので、前記増産剤を使用することにより、イソプレノイド産生能を向上させることができる。抗生物質とは、微生物が産生し、ほかの微生物の増殖を抑制する物質のことをいう。抗生物質の具体例としては、アンチマイシン、アンホテリシン、ツニカマイシン、ニスタマイシン、フォスミドマイシンが挙げられる。この中でも、呼吸鎖複合体阻害剤であるという理由でアンチマイシンが好ましい。アンチマイシンとしては、アンチマイシンAが好ましい。アンチマイシンAのタイプはA1であってもよく、A3であってもよい。副腎皮質ホルモン、或いは/及びステロイド系抗炎症剤は、メバロン酸経路におけるHMGR-CoA還元酵素のはたらきを阻害するという理由で増産剤として使用される。副腎皮質ホルモン、或いは/及びステロイド系抗炎症剤としては、ハイドロコルチゾン、グルココルチコイド、フルドロコチゾン、プロドニゾロン、デキサメタゾン等が挙げられる。抗コレステロール剤としてはスタチン系薬剤、例えば、ロバスタチン、メバスタチン、アトルバスタチン、シンバスタチン、ピタバスタチン、プラバスタチン、フルバスタチンが挙げられる。高血圧薬としては、ロテニン等が挙げられる。抗真菌剤としてロダニン-3-酢酸、呼吸鎖複合体IおよびIII阻害剤としてアラキドン酸、呼吸鎖IV阻害剤としてシアン酸塩、起炎物質としてカプサイシン、呼吸阻害剤としてアジ化合物アジ化ナトリウム等、呼吸鎖複合体I阻害剤としてアミタール、電子伝達阻害剤として硫化ナトリウム、呼吸鎖複合体III阻害剤としてn-ヘプチルヒドロキシキノリン-N-オキシド、電子伝達阻害剤として2,3-ジメルカプトプロパノールを使用することもできる。これらは、単独で用いても、2つ以上を併用しても構わない。増産剤は、水又は水溶性媒体に溶解又は分散させてから使用されることが好ましい。水又は水溶性媒体に溶解又は分散させることにより、増産剤を細胞に対して効果的に作用させることができる。具体的には、増産剤は、少量の水溶性媒体に溶かし、さらに水で希釈してから使用されることが好ましい。増産剤を溶解又は分散させるための水溶性媒体としては、エタノール、メタノール、イソプロピルアルコール等のアルコール類、アセトン、エチルメチルケトン等のケトン類、ジメチルスルホキシド等が挙げられる。水溶性媒体/水溶性媒体水の希釈率は、1/100~1/1000であることが好ましく、1/200~1/800であることがより好ましく、1/350~1/650であることがさらに好ましい。これより水の量が多いと、必要な増産剤の濃度が得られない傾向がある。他方、これより水の量が少ないと、水溶性媒体が、イソプレノイドを製造する細胞に対し悪影響を及ぼす可能性がある。上記の生産工程において、生産培地に増産剤を添加することにより、カルスによるイソプレノイドの産生効率を向上させることができる。増産剤の存在条件は、イソプレノイドの製造効率を向上させられる条件であれば特に限定されない。生産培地中の増産剤の濃度は、0.1~20μmol/Lであることが好ましく、0.5~15μmol/Lであることがより好ましく、1~10μmol/Lであることがさらに好ましく、1.5~4.5μmol/Lであることがさらにより好ましい。これらの濃度にすることで、イソプレノイド合成効率を向上できると共に、不必要に高濃度としてコストを増大させてしまうことを防ぐことができる。以上のように、増殖工程により増殖させたカルスを生産培地で培養することにより、カルスによりイソプレノイドを生合成できる。カルスにより生合成されたイソプレノイドは、細胞内に蓄積又は細胞外に放出分泌される。特に、生産培地特に液体培地の培地組成が上記好適な範囲内の場合には、カルスの細胞内にイソプレノイドが蓄積され、更に蓄積されたイソプレノイドが好適に細胞外に放出され、より好適にイソプレノイドを製造することができる。これにより、イソプレノイドの抽出が容易となるだけでなく、連続培養の可能性が広がる。細胞内にイソプレノイドが蓄積している場合には、例えば、公知の方法により細胞を破砕し、破砕物からイソプレノイドを公知の方法により抽出することによりイソプレノイドが得られる。また、イソプレノイドが細胞外に放出されている場合は、例えば、培地からイソプレノイドをトルエンヘキサン混合溶媒により抽出することによりイソプレノイドが得られる。イソプレノイド産生植物の組織片から誘導されたカルス好ましくは増殖工程により増殖させたカルスを上記生産培地中で培養することにより、カルスの細胞内に蓄積されているイソプレノイドの量イソプレノイド細胞内蓄積量を、カルス乾燥質量に対し、0.01質量以上とすることが可能となり、イソプレノイドを好適に製造できる。ここで、イソプレノイド細胞内蓄積量は、カルスを凍結乾燥させ、該カルスから精製回収したイソプレノイドのカルス乾燥質量に対する割合質量を意味し、実施例に記載の方法により算出できる。本発明の製造方法により得られるイソプレノイドは、イソプレン単位C5H8が直鎖状に共重合した構造を有するゴム天然ゴムである。イソプレノイドの重量平均分子量Mwは、好ましくは1000以上、より好ましくは10000以上、更に好ましくは100000以上、特に好ましくは1000000以上である。1000未満では、ゴムとして利用しにくい傾向がある。また、上記重量平均分子量の上限は、特に限定されない。なお、本明細書において、重量平均分子量は、ゲルパーミエーションクロマトグラフGPC東ソー株製GPC-8000シリーズ等、検出器:示差屈折計、UVによる測定値をもとに標準ポリイソプレン又は標準ポリスチレン換算により求めることができる。具体的には、実施例に記載の方法により測定できる。イソプレノイドに含まれるイソプレンユニット中の1,4-シス構造の含有量は、好ましくは10モル以上、より好ましくは30モル以上、更に好ましくは60モル以上、特に好ましくは90モル以上である。1,4-シス構造の含有量の上限は特に限定されない。1,4-シス構造の含有量は、NMRにより測定できる。以下に実施例を示して本発明をさらに詳細に説明するが、本発明は以下の実施例に限定されるものではない。1実施例で使用した化合物等について、まとめて説明する。2,4-D:2,4-ジクロロフェノキシ酢酸KI:カイネチンリモネン:D-リモネン固形化剤:寒天、アガロース、ゼラチンパラゴムノキ:東京大学大学院農学生命科学研究科附属科学の森教育研究センター樹芸研究所より入手2誘導工程パラゴムノキから茎を採取した。次に、採取した茎の表面を流水で洗浄し、さらに70エタノールで洗浄した後、約5~10に希釈した次亜塩素酸ナトリウム溶液で滅菌し、再度流水で洗浄した。次に、滅菌した茎の組織を誘導培地固体培地に差込み、培養を行った誘導工程。誘導培地は、MS培地植物細胞工学入門学会出版センターp20~p36に記載を基に、炭素源として糖類を3質量含み、更にオーキシン系植物ホルモン及びサイトカイニン系植物ホルモンを添加し、固形化剤の濃度を1.1質量とした。また、オートクレーブ121°C、20分前に、培地のpHを5.7~5.8に調整した。オーキシン系植物ホルモンとして、2,4-Dと、サイトカイニン系植物ホルモンとしてカイネチンを組み合わせて、暗所0~0.1lxで約1ヶ月培養し、パラゴムノキの組織片からカルス未分化細胞を誘導した。誘導培地の組成を表1に示す。上記誘導培地で継代培養を繰り返した後合計培養日数:90日、目視によりカルスの誘導を確認し、誘導されたカルスの直径が3mm以上のものをカルスの誘導有りと判断した。試験を18回実施し、その平均を総合して評価結果とした。その結果、表1に示した誘導培地では、イソプレノイド産生植物の組織片から誘導された細胞100質量中のカルスの割合誘導効率が90質量以上であり、ほぼカルスのみが誘導された。3増殖工程表1の誘導培地により誘導されたカルスを、約1ヶ月ごとに生育培地固体培地で継代培養してカルスを増殖させた。生育培地は、MS培地植物細胞工学入門学会出版センターp20~p36に記載を基に、炭素源として糖類を2~6質量含み、更にオーキシン系植物ホルモン及びサイトカイニン系植物ホルモンを添加し、固形化剤の濃度を0.2~1.1質量とした。また、オートクレーブ121°C、20分前に、培地のpHを5.7~5.8に調整した。オーキシン系植物ホルモンとして2,4-Dと、サイトカイニン系植物ホルモンとしてカイネチンとを組み合わせて、暗所0~0.1lxで培養し、カルスの生育を促した。生育培地の組成を表2に示す。この増殖工程において、カルスの生長率を算出した。カルスの生長率は、培養初期のカルス仕込み量質量と継代時本例では、培養28日間4週間終了時に測定したカルス質量の比率継代時に測定したカルス質量/培養初期のカルス仕込み量から算出した。その結果、培養28日間でのカルスの生長率は4.2であった。4増産剤の調製抗真菌性抗生物質であり、Lovastatininsensitive1遺伝子によりコードされるペンタトリコペプチド含有タンパク質の機能の阻害作用のあるアンチマイシンASantaCruzBiotechnologyInc.製、有効成分90以上10mgをエタノール18.2ccに溶解し1mmol/Lとした。更に、これを水で100倍~1000倍に適宜希釈し、全培地容量に対して、1μmol/L、2μmol/L、10μmol/L、となる様に添加した。5生産工程増殖させたカルスを生産培地固体培地で培養して、イソプレノイドの生産を行った。生産培地は、MS培地植物細胞工学入門学会出版センターp20~p36に記載を基に、炭素源として糖類を2~6質量含み、更にオーキシン系植物ホルモン及びサイトカイニン系植物ホルモンを添加し、固形化剤の濃度を0.2~1.1質量とした。また、オートクレーブ121°C、20分前に、培地のpHを5.7~5.8に調整した。オーキシン系植物ホルモンとして、2,4-Dと、サイトカイニン系植物ホルモンとしてカイネチンとを組み合わせて、暗所0~0.1lxで培養し、イソプレノイドの生産を促した。カルスの培養は30日間行った。増産剤として、上記4で調製した増産剤を生産培地に添加した。生産培地の組成を表3に示す。6IPPisomerase遺伝子、及びHMG-CoAReductase遺伝子に対する増産剤の効果RT-PCRReverseTranscriptionPolymeraseChainReactionにより、比較例1、及び実施例1の培地で生育させたカルスにおける、IPPisomerase遺伝子発現量、及びHMG-CoAReductase遺伝子発現量に対する増産剤の効果を測定した。カルスからRNAを抽出し、ReverTraAceにより逆転写反応を行った。得られたcDNAを鋳型としてPCRを行った。IPPisomerase遺伝子発現量の測定のためのPCRは、以下のプライマーセット:HbIPI-F1:ACCAGACTCTCGTCCTCGCT、及びHbIPI-R1:GCTACAGGTGATGCCACAATを使用し、94°Cで1分の後、94°Cで15秒、63°Cで15秒、及び72°Cで1分を1サイクルとして30サイクル繰り返し、4°Cで保温する条件により行った。HMG-CoAReductase遺伝子発現量の測定のためのPCRは、以下のプライマーセット:HbHMGR-F1:CCACTCCGAAAGCGTCGGAC、及びHbHMGR-R1:CCATTGCATCGCCAGTGCTGを使用し、94°Cで2分の後、98°Cで15秒、及び68°Cで1分を1サイクルとして30サイクル繰り返し、4°Cで保温する条件により行った。RT-PCR産物の電気泳動結果を図1に示す。この結果から、アンチマイシンAが、IPPisomerase遺伝子発現量を減少させ、またHMG-CoAReductase遺伝子発現量を増加させることがわかる。7イソプレノイドの精製回収培養後のカルス約70gを生産培地より回収し、液体窒素で凍結させた後、凍結乾燥させて、カルス中の水分を除去した。次いで、水分を除去したカルスを乳鉢で粉砕した後、ソックスレー抽出装置を用いて有機溶媒によりイソプレノイドの抽出を行った。まず、99メタノールで抽出を行い、不要な代謝物を除去した。その後99トルエンでさらに抽出することで、イソプレノイドを精製回収した。生産工程により製造されたイソプレノイドの量カルスの細胞内に蓄積されているイソプレノイドの量イソプレノイド細胞内蓄積量を算出した。イソプレノイド細胞内蓄積量は、凍結乾燥させたのちのカルス乾燥質量に対し、該カルスから精製回収したイソプレノイドの割合質量により算出した。実施例1~3におけるイソプレノイド細胞内蓄積量を、比較例1での細胞内蓄積量を100とした指数に換算した。その結果を表4に示す。また、実施例4~6におけるイソプレノイド細胞内蓄積量を、比較例2での細胞内蓄積量を100とした指数に換算した。その結果を表5に示す。重量平均分子量Mwは、下記1.~7.の条件で、ゲルパーミエーションクロマトグラフGPC法により測定した。1.装置:東ソー社製HLC-80202.分離カラム:東ソー社製GMH-XL3.測定温度:40°C4.キャリア:テトラヒドロフラン5.流量:0.6mL/分6.検出器:示差屈折、UV7.分子量標準:標準ポリスチレン結果を表4及び表5に示す。表4及び表5の結果より、パラゴムノキのカルスの培養系に増産剤を添加することにより、製造効率を大幅に向上させられることを確認できた。本発明の方法で製造されたイソプレノイドの重量平均分子量は、1,000,000以上であり、上記増産剤を用いることにより分子量を増大できることが確認できた。"