"細胞培養容器を形成するために用いられる多層フィルムであって、密度0.87g/cm3~0.90g/cm3のポリエチレン系樹脂からなる基材と、密度0.896g/cm3~0.93g/cm3のポリエチレン系樹脂からなる細胞培養面を形成する内層とを有することを特徴とする多層フィルム。少なくとも3層を有する多層フィルムであり、密度0.886g/cm3~0.93g/cm3のポリエチレン系樹脂からなる外層を有することを特徴とする請求項1に記載の多層フィルム。基材のポリエチレン系樹脂の密度が、0.87g/cm3~0.885g/cm3であることを特徴とする請求項1または請求項2のいずれかに記載の多層フィルム。多層フィルムの厚さに対する基材の厚さが60以上であることを特徴とする請求項1~3のいずれかに記載の多層フィルム。酸素透過係数が750mlmm/m2dayatm37°C-80RH以上であることを特徴とする請求項1~4のいずれかに記載の多層フィルム。二酸化炭素透過係数が2100mlmm/m2dayatm37°C-80RH以上であることを特徴とする請求項1~5のいずれかに記載の多層フィルム。細胞培養面を形成する内層が、アンチブロッキング剤及び/又はスリップ剤及び/又は滑剤を含有しないことを特徴とする請求項1~6のいずれかに記載の多層フィルム。請求項1~請求項7のいずれかに記載の多層フィルムにより形成されたことを特徴とする細胞培養容器。容器を形成する多層フィルムの厚さが150μm以下であることを特徴とする請求項8に記載の細胞培養容器。しかしながら、特許文献1に記載の細胞培養用バッグは、線状低密度ポリエチレンと、低密度ポリエチレンをブレンドした単層フィルムからなるものであり、その密度は明らかではなく、フィルムの厚さは例えば50~300μmとされている。ポリエチレン系樹脂は一般的に結晶化度を下げる、すなわち密度を下げることによりガス透過性が向上する。しかしながら一定以上密度が下がると、樹脂の粘着性が増大してハンドリング性の低下耐ブロッキング性の低下が生ずる。またフィルムを薄くすることでも培養容器としてのガス透過性は高まるが、一方で容器としての強度が低下する。特許文献1の単層フィルムでは高いガス透過性とハンドリング性を兼ね備えた培養バッグを実現することはできない。さらに、特許文献2に記載のフィルムは、細胞培養容器を形成するための多層のフィルムであるが、細胞培養面を形成する内層にはポリスチレンが使用され、基材にはスチレン―エチレン―ブタジエン―スチレンブロックコポリマー、エチレンビニルアセテート、ポリプロピレンから構成されるポリマー材料等が使用されるものである。しかしながら、これらの構成では満足のいくガス透過性を実現することができない。そこで、本発明者らは鋭意研究した結果、ブロッキングし易く溶出量も多いが、優れたガス透過性を有する非常に低い密度のポリエチレンを基材として使用するとともに、細胞培養面にはブロッキングを引き起こしにくくかつ基材からの溶出物を低減することができるポリエチレン系樹脂を使用することで、優れたガス透過性、耐ブロッキング性、低溶出性及び放射線滅菌適性を兼ね備えた細胞培養容器用の多層フィルムを開発することに成功し、本発明を完成させた。すなわち、本発明は、優れたガス透過性とハンドリング性、耐ブロッキング性、低溶出性及び放射線滅菌適性を兼ね備えた細胞培養容器用多層フィルム、及びこれを用いた細胞培養容器の提供を目的とする。上記目的を達成するため、本発明の多層フィルムは、細胞培養容器を形成するために用いられる多層フィルムであって、密度0.87g/cm3~0.90g/cm3のポリエチレン系樹脂からなる基材と、密度0.896g/cm3~0.93g/cm3のポリエチレン系樹脂からなる細胞培養面を形成する内層とを有する構成としてある。また、本発明の多層フィルムを、少なくとも3層を有する多層フィルムとし、密度0.886g/cm3~0.93g/cm3のポリエチレン系樹脂からなる外層を有する構成とすることも好ましい。さらに、本発明の細胞培養容器は、このような多層フィルムにより形成されたものとしてある。本発明によれば、細胞培養容器のガス透過性を、細胞培養容器のハンドリング性を低下させることなく向上させることができる。このため、従来よりも高密度での培養を行うことができ、細胞増殖効率を向上させることが可能となる。以下、本発明の実施形態について具体的に説明する。[第一実施形態]まず、本発明の第一実施形態の多層フィルム、及び細胞培養容器について、図1及び図2を参照して説明する。図1は、本実施形態の多層フィルムの構成を示す図であり、図2は、本実施形態の多層フィルムにより形成された細胞培養容器の構成を示す図である。本実施形態の多層フィルムは、図1に示すように、細胞培養容器を形成するために用いられるものであり、細胞培養容器の本体部分を形成する基材1と、細胞培養面を形成する内層2最内層とを有している。基材1及び内層2は、高ガス透過性、ヒートシール性、及び透明性を備えた材料を用いて構成される。また、内層2は上記特性に加え、低細胞毒性を備える材料で構成される。このような材料としては、例えば直鎖状低密度ポリエチレンLLDPE,LinearLowDensityPolyethyleneや、超低密度ポリエチレンVLDPE,VeryLowDensityPolyethylene/ULDPE,UltraLowDensityPolyethylene、低密度ポリエチレンLDPELowDensityPolyethylene、あるいはこれらのブレンドなどのポリエチレン系樹脂を用いることができる。また、基材1には、上記ポリエチレン系樹脂であって、密度が0.87g/cm3~0.90g/cm3のものを用いることが好ましい。細胞培養容器の本体部分を形成する基材1の材料として、このような非常に低い密度のものを使用することで、本実施形態の多層フィルムのガス透過性を優れたものとすることが可能となる。ここで、上記ポリエチレン系樹脂の密度0.87g/cm3~0.90g/cm3は、このポリエチレン系樹脂を、細胞培養容器を構成する多層フィルムの基材として使用する場合に、ハンドリングができる最も低密度の範囲を示している。すなわち、密度が0.87g/cm3を下回ると、軟化温度や融点の低下によりフィルム自体を構成することが困難となる。したがって、基材の密度は、0.87g/cm3以上とすることが好ましい。また、密度が0.90g/cm3より大きくなると、強度やハンドリング性は向上するが、密度が増えるに従いガス透過性が低下する。このため、基材の密度は、0.90g/cm3以下とすることが好ましい。また、ガス透過性をさらに向上させるために、基材の密度を0.885g/cm3以下にすることがより好ましい。ポリエチレン系樹脂の基材の密度を0.885g/cm3以下にすると、粘着性が大きく、これを細胞培養面に使用するとブロッキングが生じ内面が貼り合わさって離れず、細胞培養容器として使用することができなくなる。一方、細胞培養容器の外側の面に用いる場合には、フィルム自体に粘着性はあるものの細胞培養容器として使用することは可能である。このため、本実施形態の多層フィルムを、細胞培養容器の本体部分を形成する基材1と、細胞培養面を形成する内層2により構成するとともに、基材1にこのような非常に低い密度のものを使用することで、細胞培養容器のガス透過性をさらに向上させ、かつハンドリングし得るものとすることが可能である。内層2は、本実施形態の多層フィルムを用いて細胞培養容器を製造する場合に、その細胞培養容器における細胞培養面を形成する層を構成する。また、内層2には、上記ポリエチレン系樹脂であって、密度が0.896g/cm3~0.93g/cm3のものを用いることが好ましい。細胞培養面を形成する内層2の材料として、上記ポリエチレン系樹脂の密度が0.896g/cm3未満のものを使用するとブロッキングが生じ、内面が貼り合わさって離れず、細胞培養容器として使用することができなくなる。一方、内層2の密度を0.896g/cm3以上にすれば、ブロッキングが比較的生じにくくなる。このため、内層2の密度は0.896g/cm3以上とすることが好ましい。また、内層2の密度を0.93g/cm3より大きくすると、基材1の密度を低減させることにより得られる高ガス透過性の効果が、内層2により大きく低減されてしまう。このため、内層2の密度は0.93g/cm3以下とすることが好ましい。また、本実施形態の内層2は、上記ポリエチレン系樹脂に、アンチブロッキング剤、及び/又は、スリップ剤、及び/又は、滑剤を含有させることなく製造されたものとすることが好ましい。これらを含有させると、内層2にブロッキングが生じにくくなる一方、溶出してくるアンチブロッキング剤、及び/又は、スリップ剤、及び/又は、滑剤によって細胞の増殖が阻害されてしまうことがある。一般に、アンチブロッキング剤やスリップ剤、滑剤として脂肪酸アミドや脂肪酸エステル、微粒子等が用いられる。なお、本実施形態において、基材1と内層2との間にさらに他の層を形成させることもできる。また、本実施形態の多層フィルムは、基材1の厚さを、内層2の厚さに対して、1.5以上の比率で構成することが好ましい。すなわち、本実施形態の多層フィルムは、基材と内層を備えた多層構造としてあるところ、このように基材1の厚さを多層フィルムの厚さの6割以上とすれば、基材1を非常に低い密度のポリエチレン系樹脂を用いて形成することによるガス透過性の向上効果が、内層2により大きく低減されることを防止することが可能となる。さらに、本実施形態の多層フィルムの厚さは、150μm以下とすることが好ましい。この多層フィルムを用いて形成する培養容器としてのガス透過性を考慮した場合、多層フィルム厚さを150μm以下にすることが適切であるためである。これは、以下の第二実施形態においても同様である。また、本実施形態の多層フィルムは、上記のような構成を備えることにより、以下の実施例に示す通り、酸素透過係数が750mlmm/m2dayatm37°C-80RH以上、二酸化炭素透過係数が2100mlmm/m2dayatm37°C-80RH以上のものを得ることができる。次に、このような基材1及び内層2からなる多層フィルムを用いて製造される細胞培養容器10の例を図2に示す。同図に示すように、細胞培養容器10において、非常に低い密度のポリエチレン系樹脂からなる基材1の内側に内層2が接着されており、これが細胞培養面を形成する構成となっている。このため、基材1の材料として、上述したようにブロッキングの観点から細胞培養面には使用できないレベルの低い密度のポリエチレン系樹脂を使用して細胞培養容器のガス透過性を向上させるとともに、内層2により細胞培養面を形成することで、細胞培養容器の内面がブロッキングにより粘着して離れなくなることを防止するとともに、基材からの溶出物を低減することが可能となっている。また、本実施形態の多層フィルムはポリエチレン系樹脂のみにより構成されており、培養容器に必要とされる放射線滅菌適性にも優れる。一般的な滅菌法としてγ線滅菌や電子線滅菌といった放射線滅菌と高圧蒸気滅菌やエチレンオキサイドガス滅菌等が挙げられる。高圧蒸気滅菌は時間、手間等がかかること、エチレンオキサイドガスはその毒性のため製品への残留が問題となる。従って、γ線や電子線といった放射線滅菌が望ましいが、耐性のない樹脂には使用できない。しかし、本実施形態の多層フィルムは放射線耐性に優れるポリエチレン系樹脂のみにより構成されており、γ線や電子線といった放射線滅菌が可能となっている。以上説明したように、本実施形態の多層フィルム、及び細胞培養容器によれば、細胞培養容器の基材としてハンドリングができる最も低密度の範囲のポリエチレン系樹脂を使用するとともに、内層にはブロッキングが比較的生じにくく、かつ密度の低いポリエチレン系樹脂を使用して構成することができる。また、培養容器としての放射線滅菌適性も有しており、このため、従来よりもガス透過性に優れ、細胞培養効率を向上させることができる細胞培養容器を提供することが可能となっている。[第二実施形態]次に、本発明の第二実施形態の多層フィルム、及び細胞培養容器について、図3及び図4を参照して説明する。図3は、本実施形態の多層フィルムの構成を示す図であり、図4は、本実施形態の多層フィルムにより形成された細胞培養容器の構成を示す図である。本実施形態は、第一実施形態にさらに密度0.886g/cm3~0.93g/cm3のポリエチレン系樹脂を外層3に設けた構成である。なお、本実施形態の多層フィルムは、基材1と外層3との間にさらに一又は二以上の外層を設けることもできる。また、基材1と内層2との間にさらに一又は二以上の内層を設けることもできる。外層3の密度が0.886g/cm3より小さい場合には、フィルムの粘着性のため、本実施形態の多層フィルムを用いた細胞培養容器の製造、取り扱いが機械的に困難となるが、0.886g/cm3以上であれば、細胞培養容器の製造、取り扱いが機械的に可能となる。このため、外層3の密度は0.886g/cm3以上とすることが好ましい。また、外層3の密度が0.93g/cm3より大きい場合には、基材1の材料として超低密度のものを用いることより得られる高ガス透過性の効果が、外層3により低減されてしまう。このため、外層3の密度は0.93g/cm3以下とすることが好ましい。また、本実施形態の多層フィルムは、基材1の厚さを、フィルムにおける基材1以外の厚さ、すなわち内層2及び外層3の厚さの合計に対して1.5以上の比率で構成することが好ましい。このように多層フィルムにおける基材1の厚さの割合を6割以上とすれば、第一実施形態において上述した通り、基材1によるガス透過性の向上効果を、その他の層により大きく低減させることなく細胞培養容器を製造することが可能となる。次に、このような基材1、内層2、及び外層3からなる多層フィルムを用いて製造される細胞培養容器20の例を図4に示す。同図に示すように、細胞培養容器20は、非常に低い密度のポリエチレン系樹脂からなる基材1の内側に内層2が接着されて細胞培養面を形成するとともに、基材1の外側に外層3が接着されて細胞培養容器の外面を形成する構成となっている。このため、本実施形態では、基材1の材料として、細胞培養容器のガス透過性を向上させるために極めて密度が低いポリエチレン系樹脂を使用しても、細胞培養容器の内面同士が引っ付いて離れなくなることはなく、また細胞培養容器を製造する際に機械的な取り扱いが可能である。このように、本実施形態の細胞培養容器は、製造工程を含めたあらゆる使用範囲においてハンドリング性を低下させることなく、ガス透過性を向上させたものとなっている。以上説明したように、本実施形態の多層フィルム、及び細胞培養容器によれば、フィルムの基材としてハンドリングができるぎりぎりの超低密度のポリエチレン系樹脂を使用するとともに、フィルムの最内層及び最外層にはブロッキングが比較的生じにくく、かつ低い密度のポリエチレン系樹脂を使用することができる。その結果、従来よりもガス透過性に優れ、取り扱い易い細胞培養容器を得ることが可能となっている。以下、本発明の多層フィルムのガス透過性試験に関する実施例と比較例、及び本発明の細胞培養容器の細胞培養試験に関する実施例と比較例について説明する。以下、本発明の多層フィルムを細胞培養フィルム、及びこのフィルムを用いて作製した細胞培養容器を培養バッグと称する場合がある。<ガス透過性試験>実施例13層からなる細胞培養フィルムを、ラボプラストミル株式会社東洋精機製作所製によりT-ダイ法にて共押出成形した。このとき、基材には、カーネルKS240TLLDPE,日本ポリエチレン株式会社製、密度0.880g/cm3を使用した。また、内層及び外層には、エクセレンGMHCB2001LDPE,住友化学工業株式会社製、密度0.920g/cm3とカーネルKM262LLDPE,日本ポリエチレン株式会社製、密度0.898g/cm3を6:4の重量比でブレンドした樹脂を使用した。製造した細胞培養フィルムにおける基材の厚さは66μm、内層の厚さは19μm、外層の厚さは12μmであり、細胞培養フィルム全体の厚さは97μmであった。この細胞培養フィルムを使用して、混合ガス透過測定装置GPM-250ジーエルサイエンス株式会社製により単位厚さ当たりの酸素透過係数mlmm/m2dayatm37°C-80RHを測定した。その結果を図5に示す。同図において、酸素透過係数が大きいほど、細胞培養フィルムのガス透過性が高いことを示している。同図に示されるように、実施例1で得られた細胞培養フィルムの酸素透過係数はおよそ970mlmm/m2dayatm37°C-80RHを示している。また、この細胞培養フィルムを使用して、同様に混合ガス透過測定装置GPM-250により単位厚さ当たりの二酸化炭素透過係数mlmm/m2dayatm37°C-80RHを測定した。その結果を図6に示す。同図において、二酸化炭素透過係数が大きいほど、細胞培養フィルムのガス透過性が高いことを示している。同図に示されるように、実施例1で得られた細胞培養フィルムの二酸化炭素透過係数はおよそ2190mlmm/m2dayatm37°C-80RHを示している。実施例2実施例1と同様にして、3層からなる細胞培養フィルムを製造した。このとき、基材には、カーネルKS340TLLDPE,日本ポリエチレン株式会社製密度0.880g/cm3を使用した。また、内層及び外層には、カーネルKF283LLDPE,日本ポリエチレン株式会社製、密度0.921g/cm3とカーネルKM262LLDPE,日本ポリエチレン株式会社製、密度0.898g/cm3を6:4の重量比でブレンドした樹脂を使用した。製造した細胞培養フィルムにおける基材の厚さは63μm、内層の厚さは17μm、外層の厚さは12μmであり、細胞培養フィルム全体の厚さは92μmであった。この細胞培養フィルムを使用して、実施例1と同様に、単位厚さ当たりの酸素透過係数と二酸化炭素透過係数を測定した。その結果をそれぞれ図5、図6に示す。これらの図において、実施例2で得られた細胞培養フィルムの酸素透過係数はおよそ810mlmm/m2dayatm37°C-80RHを示し、二酸化炭素透過係数はおよそ2490mlmm/m2dayatm37°C-80RHを示している。実施例3実施例1と同様にして、3層からなる細胞培養フィルムを製造した。このとき、基材には、カーネルKS240TLLDPE,日本ポリエチレン株式会社製、密度0.880g/cm3を使用した。また、内層及び外層には、エクセレンGMHCB2001LDPE,住友化学工業株式会社製、密度0.920g/cm3を使用した。製造した細胞培養フィルムにおける基材の厚さは65μm、内層の厚さは15μm、外層の厚さは14μmであり、細胞培養フィルム全体の厚さは94μmであった。この細胞培養フィルムを使用して、実施例1と同様に、単位厚さ当たりの酸素透過係数と二酸化炭素透過係数を測定した。その結果をそれぞれ図5、図6に示す。これらの図において、実施例3で得られた細胞培養フィルムの酸素透過係数はおよそ800mlmm/m2dayatm37°C-80RHを示し、二酸化炭素透過係数はおよそ2380mlmm/m2dayatm37°C-80RHを示している。実施例42層からなる細胞培養フィルムを、ラボプラストミル株式会社東洋精機製作所製によりT-ダイ法にて共押出成形した。このとき、基材には、カーネルKS240TLLDPE,日本ポリエチレン株式会社製、密度0.880g/cm3を使用した。また、内層には、エクセレンGMHCB2001LDPE,住友化学工業株式会社製、密度0.920g/cm3を使用した。製造した細胞培養フィルムにおける基材の厚さは88μm、内層の厚さは18μmであり、細胞培養フィルム全体の厚さは106μmであった。この細胞培養フィルムを使用して、実施例1と同様に、単位厚さ当たりの酸素透過係数と二酸化炭素透過係数を測定した。その結果をそれぞれ図5、図6に示す。これらの図において、実施例4で得られた細胞培養フィルムの酸素透過係数はおよそ910mlmm/m2dayatm37°C-80RHを示し、二酸化炭素透過係数はおよそ2540mlmm/m2dayatm37°C-80RHを示している。実施例73層からなる細胞培養フィルムを、ラボプラストミル株式会社東洋精機製作所製によりT-ダイ法にて共押出成形した。このとき、基材には、カーネルKF261TLLDPE,日本ポリエチレン株式会社製、密度0.898g/cm3を使用した。また、内層には、ユメリット125FNLLDPE,宇部丸善ポリエチレン製、密度0.924g/cm3を、外層には、ユメリット125FNLLDPE,宇部丸善ポリエチレン製、密度0.924g/cm3を使用した。製造した細胞培養フィルムにおける基材の厚さは75μm、内層の厚さは12μm、外層の厚さは13μmであり、細胞培養フィルム全体の厚さは100μmであった。この細胞培養フィルムを使用して、実施例1と同様に、単位厚さ当たりの酸素透過係数と二酸化炭素透過係数を測定した。その結果をそれぞれ図5、図6に示す。これらの図において、実施例7で得られた細胞培養フィルムの酸素透過係数はおよそ780mlmm/m2dayatm37°C-80RHを示し、二酸化炭素透過係数はおよそ2400mlmm/m2dayatm37°C-80RHを示している。比較例1単層の細胞培養フィルムを、エボリューSP0511LLDPE,株式会社プライムポリマー製、密度0.903g/cm3を材料として、ラボプラストミルにより製造した。この細胞培養フィルムの厚さは97μmであった。この細胞培養フィルムを使用して、実施例1と同様に、単位厚さ当たりの酸素透過係数と二酸化炭素透過係数を測定した。その結果をそれぞれ図5、図6に示す。これらの図において、比較例1で得られた細胞培養フィルムの酸素透過係数はおよそ500mlmm/m2dayatm37°C-80RHを示し、二酸化炭素透過係数はおよそ1550mlmm/m2dayatm37°C-80RHを示している。比較例2単層からなる細胞培養フィルムを、ハーモレックスNF325NLLDPE,日本ポリエチレン株式会社製、密度0.908g/cm3を材料として製造した。この細胞培養フィルムの厚さは97μmであった。この細胞培養フィルムを使用して、比較例1と同様に、酸素透過係数と二酸化炭素透過係数を測定した。その結果をそれぞれ図5、図6に示す。これらの図において、比較例2で得られた細胞培養フィルムの酸素透過係数はおよそ480mlmm/m2dayatm37°C-80RHを示し、二酸化炭素透過係数はおよそ1480mlmm/m2dayatm37°C-80RHを示している。比較例3単層からなる細胞培養フィルムを、カーネルKF271LLDPE,日本ポリエチレン株式会社製、密度0.913g/cm3を材料として製造した。この細胞培養フィルムの厚さは97μmであった。この細胞培養フィルムを使用して、比較例1と同様に、酸素透過係数と二酸化炭素透過係数を測定した。その結果をそれぞれ図5、図6に示す。これらの図において、比較例3で得られた細胞培養フィルムの酸素透過係数はおよそ370mlmm/m2dayatm37°C-80RHを示し、二酸化炭素透過係数はおよそ1180mlmm/m2dayatm37°C-80RHを示している。以上の結果から、実施例1-4,7の酸素透過係数は、比較例のうち最も酸素透過係数が大きい比較例1の酸素透過係数に対して、それぞれ94、62、60、82、56大きいことがわかる。また、実施例1-4,7の二酸化炭素透過係数は、比較例のうち最も二酸化炭素透過係数が大きい比較例1の二酸化炭素透過係数に対して、それぞれ41、61、54、64、55大きいことがわかる。したがって、本発明の細胞培養フィルム、及びこれを用いて製造した細胞培養容器は、優れたガス透過性を示すことが明らかとなった。<細胞培養試験1>実施例5次に、実施例1において得られた細胞培養フィルムを用いて細胞培養容器を2個製造し、それぞれの細胞培養容器を使用して、異なる培養時間による細胞培養試験を行った。細胞培養容器のサイズはいずれも80mm×80mmであり、培養液としては、AlyS505N-7株式会社細胞科学研究所製50mlをそれぞれに使用した。また、培養細胞には、hPBMCHumanPeripheryBloodMononuclearCells、CellApplications,Incを使用し、初期細胞密度をそれぞれ約18万cells/mlとした。その結果を図7に示す。同図に示される通り、培養時間を95時間としたときの回収時細胞密度cells/mlは、約298万、培養時間を120時間としたときの回収時細胞密度cells/mlは、約370万であった。比較例4比較例1の細胞培養フィルムを用いて細胞培養容器を2個製造し、それぞれの細胞培養容器を使用して、異なる培養時間による細胞培養試験を行った。細胞培養容器のサイズ、培養液、培養細胞、初期細胞密度の各条件は、実施例5と同様であり、細胞培養容器を形成する細胞培養フィルムのみが実施例5と相違している。その結果を図7に示す。同図に示される通り、培養時間を95時間としたときの回収時細胞密度cells/mlは、約305万、培養時間を120時間としたときの回収時細胞密度cells/mlは、約324万であった。比較例5比較例2の細胞培養フィルムを用いて細胞培養容器を2個製造し、それぞれの細胞培養容器を使用して、異なる培養時間による細胞培養試験を行った。細胞培養容器のサイズ、培養液、培養細胞、初期細胞密度の各条件は、実施例5と同様であり、細胞培養容器を形成する細胞培養フィルムのみが実施例5と相違している。その結果を図7に示す。同図に示される通り、培養時間を95時間としたときの回収時細胞密度cells/mlは、約241万、培養時間を120時間としたときの回収時細胞密度cells/mlは、約288万であった。比較例6比較例3の細胞培養フィルムを用いて細胞培養容器を2個製造し、それぞれの細胞培養容器を使用して、異なる培養時間による細胞培養試験を行った。細胞培養容器のサイズ、培養液、培養細胞、初期細胞密度の各条件は、実施例5と同様であり、細胞培養容器を形成する細胞培養フィルムのみが実施例5と相違している。その結果を図7に示す。同図に示される通り、培養時間を95時間としたときの回収時細胞密度cells/mlは、約227万、培養時間を120時間としたときの回収時細胞密度cells/mlは、約279万であった。参考例1細胞培養用dishベクトンディッキンソンアンドカンパニー製を2個使用して、それぞれ異なる培養時間による細胞培養試験コントロール実験を行った。培養液、培養細胞、及び初期細胞密度の各条件は、実施例5と同様であり、細胞培養バッグを使用することなく開放系での細胞培養を行った点のみが実施例5と相違している。その結果を図7に示す。同図に示される通り、培養時間を95時間としたときの回収時細胞密度cells/mlは、約300万、培養時間を120時間としたときの回収時細胞密度cells/mlは、約418万であった。以上の結果に示される通り、培養時間が95時間の場合には、実施例5の細胞培養容器を使用したときの細胞密度は、比較例4に示す単層の細胞培養容器を用いた場合や、参考例1に示す開放系の培養の場合とほぼ同様となっている。しかしながら、培養時間が長くなるにつれて、細胞培養バッグのガス透過性の影響が大きくなり、培養時間が120時間の場合には、実施例5の細胞培養バッグを使用したときの細胞密度は、比較例4-6に示す細胞培養容器を用いた場合の細胞密度に対して、それぞれおよそ14、28、33大きくなっている。また、培養時間が95時間の場合も、実施例5の細胞培養容器を使用したときの細胞密度は、比較例5,6に示す細胞培養容器を用いた場合の細胞密度に対して、それぞれおよそ24、31大きくなっている。したがって、本発明の高ガス透過性を示す細胞培養フィルムを用いて形成された細胞培養容器によれば、細胞培養効率を向上できることが明らかとなった。<細胞培養試験2>実施例6次に、実施例1において得られた細胞培養フィルムを用いて細胞培養容器を2個製造し、それぞれの細胞培養容器を使用して、異なる培養時間による細胞培養試験を行った。細胞培養容器のサイズはいずれも80mm×80mmであり、培養液としては、AlyS505N-0株式会社細胞化学研究所製40mlをそれぞれ使用した。また、培養細胞には、JurkatE6.1株HumanleukaemicTcelllymphoblastを使用し、初期細胞密度をそれぞれ約46万cells/mlとした。その結果を図8に示す。同図に示される通り、培養時間を72時間としたときの回収時細胞密度cells/mlは、約53万、培養時間を96時間としたときの細胞密度cells/mlは、約99万であった。比較例7比較例1の細胞培養フィルムを用いて細胞培養容器を2個製造し、それぞれの細胞培養容器を使用して、異なる培養時間による細胞培養試験を行った。細胞培養容器のサイズ、培養液、培養細胞、初期細胞密度の各条件は、実施例6と同様であり、細胞培養容器を形成する細胞培養フィルムのみが実施例6と相違している。その結果を図8に示す。同図に示される通り、培養時間を72時間としたときの回収時細胞密度cells/mlは、約53万、培養時間を96時間としたときの回収時細胞密度cells/mlは、約89万であった。比較例8比較例2の細胞培養フィルムを用いて細胞培養容器を2個製造し、それぞれの細胞培養容器を使用して、異なる培養時間による細胞培養試験を行った。細胞培養容器のサイズ、培養液、培養細胞、初期細胞密度の各条件は、実施例6と同様であり、細胞培養容器を形成する細胞培養フィルムのみが実施例6と相違している。その結果を図8に示す。同図に示される通り、培養時間を72時間としたときの回収時細胞密度cells/mlは、約51万、培養時間を96時間としたときの回収時細胞密度cells/mlは、約88万であった。参考例2細胞培養用dishベクトンディッキンソンアンドカンパニー製を2個使用して、それぞれ異なる培養時間による細胞培養試験コントロール実験を行った。培養液、培養細胞、及び初期細胞密度の各条件は、実施例6と同様であり、細胞培養バッグを使用することなく開放系での細胞培養を行った点のみが実施例6と相違している。その結果を図8に示す。同図に示される通り、培養時間を72時間としたときの回収時細胞密度cells/mlは、約62万、培養時間を96時間としたときの回収時細胞密度cells/mlは、約111万であった。以上の結果に示される通り、培養時間が72時間の場合には、実施例6の細胞培養容器を使用したときの細胞密度は、比較例7,8の細胞培養容器を用いた場合とほぼ同様の値を示し、参考例2に示す開放系の培養の場合よりもやや小さくなっている。しかしながら、培養時間が長くなるにつれて、細胞培養容器のガス透過性の影響が大きくなり、培養時間が96時間の場合には、実施例6の細胞培養容器を使用したときの細胞密度は、比較例7,8に示す細胞培養容器を用いた場合の細胞密度に対して、それぞれおよそ11、13大きくなっている。このように、培養する細胞や培養液、初期培養密度の条件を変えた場合でも、本発明の高ガス透過性を示す細胞培養フィルムを用いて形成された細胞培養容器によれば、細胞培養効率を向上できることが明らかとなった。<細胞培養試験3>実施例8次に、実施例7において得られた細胞培養フィルムを用いて細胞培養容器を2個製造し、それぞれの細胞培養容器を使用して、異なる培養時間による細胞培養試験を行った。細胞培養容器のサイズはいずれも80mm×80mmであり、培養液としては、AlyS505N-7株式会社細胞化学研究所製40mlをそれぞれ使用した。また、培養細胞には、hPBMCHumanPeripheryBloodMononuclearCells、CellApplications,Incを使用し、初期細胞密度をそれぞれ約18.5万cells/mlとした。その結果を図9に示す。同図に示される通り、培養時間を72時間としたときの回収時細胞密度cells/mlは、約114万、培養時間を216時間としたときの細胞密度cells/mlは、約350万であった。比較例9比較例2の細胞培養フィルムを用いて細胞培養容器を2個製造し、それぞれの細胞培養容器を使用して、異なる培養時間による細胞培養試験を行った。細胞培養容器のサイズ、培養液、培養細胞、初期細胞密度の各条件は、実施例8と同様であり、細胞培養容器を形成する細胞培養フィルムのみが実施例8と相違している。その結果を図9に示す。同図に示される通り、培養時間を72時間としたときの回収時細胞密度cells/mlは、約100万、培養時間を216時間としたときの回収時細胞密度cells/mlは、約301万であった。以上の結果に示される通り、培養時間が72時間の場合には、実施例8の細胞培養容器を使用したときの細胞密度は、比較例9に示す細胞培養容器を用いた場合の細胞密度に対して、およそ14大きくなっている。また、培養時間が216時間の場合には、実施例8の細胞培養容器を使用したときの細胞密度は、比較例9に示す細胞培養容器を用いた場合の細胞密度に対して、およそ16大きくなっている。このように、本発明の細胞培養フィルムの密度範囲内における比較的高い密度の基材及び外層を用いて形成された細胞培養容器により培養を行った場合、この基材よりも密度が大きく、かつ外層よりも密度が小さい単層フィルムからなる細胞培養容器により培養を行った場合よりも、細胞培養効率を向上できることが明らかとなった。本発明は、以上の実施形態や実施例に限定されるものではなく、本発明の範囲内において、種々の変更実施が可能であることは言うまでもない。例えば、第二実施形態において、基材1として単独ではハンドリングができない密度のポリエチレン系樹脂を使用し、これを内層2と外層3に挟み込むことで、ガス透過性をさらに向上させるなど適宜変更することが可能である。"