"1赤潮及び緑潮現象を起こす有害藻類を採取して培養する工程、2前記工程1で培養された有害藻類に特異性があるウイルスを選別する工程、3前記工程2で選別されたウイルスのカプシド遺伝子をクローニングする工程、4前記工程3でクローニングされた遺伝子を組換え大腸菌または酵母で発現した後、ナノカプシドを大量産生する工程、及び5前記工程4で大量産生されたナノカプシドに殺藻物質を搭載する工程とを含むナノカプシドを用いた有害藻類の制御方法。前記赤潮及び緑潮現象を起こす有害藻類が、ヘテロカプササーキュラリスカーマHeterocapsacircularisquama、キートケロスサルスギネウムChaetocerossalsugineum、コクロディニウムポリクリコイデスCochlodiniumpolykrikoides、ヘテロシグマアカシオHeterosigmaakashiwo、シャットネラマリーナChattonellamarina及びプロトケラチウムレティキュラータムProtoceratiumreticulatumからなる群から選択されるいずれかひとつであることを特徴とする、請求項1に記載のナノカプシドを用いた有害藻類の制御方法。前記殺藻物質が、マグネシウム有機クレイ、キノン系化合物及びチアゾリジンジオンthiazolidinedione系化合物からなる群から選択されるいずれかひとつであることを特徴とする、請求項1に記載のナノカプシドを用いた有害藻類の制御方法。前記キノン系化合物が、下記の化学式1または2で表わされ、ここで下記の化学式1または化学式2のRは置換または置換されないアルキル、置換または置換されないヘテロシクロアルキル、ヘテロシクロアルケニルまたはヘテロアリールであることを特徴とする、請求項3に記載のナノカプシドを用いた有害藻類の制御方法。前記チアゾリジンジオン系化合物が、下記の化学式3で表わされ、ここで下記の化学式3のR1は水素、ニトロ基、アミン、アルキル、メトキシ、トリフルオロメチル、カルボキシルまたはハロゲンで、R2は水素、メチル、エチル、または置換されないヘテロシクロアルキル、ヘテロシクロアルケニルまたはヘテロアリールであり、nは0ないし5の整数であることを特徴とする、請求項3に記載のナノカプシドを用いた有害藻類制御方法。前記有害藻類に特異性のあるウイルスは、カプシド内部に核酸がなく、増殖力がなくて人体有害性がなく、カプシドタンパク質が殺藻物質の伝達体にのみ用いられることを特徴とする、請求項1に記載のナノカプシドを用いた有害藻類の制御方法。前記有害藻類に特異性のあるウイルスは、ヘテロカプササーキュラリスカーマRNAウイルスHeterocapsacircularisquamaRNAVirus,HcRNAV、キートケロスサルスギネウム核内封入体ウイルスChaetocerossalsugineumNuclearInclusionVirus,CsNIV及びヘテロシグマアカシオRNAウイルスHeterosigmaakashiwoRNAvirus,HaRNAVからなる群から選択されるいずれかひとつであることを特徴とする、請求項1に記載のナノカプシドを用いた有害藻類の制御方法。前記ナノカプシドに殺藻物質を搭載する工程は、生物化学的な搭載方法及び物理化学的搭載方法のいずれか一つの方法、または2つの方法を混合した方法で遂行されることを特徴とする、請求項1に記載のナノカプシドを用いた有害藻類の制御方法。前記生物学的な搭載方法は、遺伝子組換え方法を用いた共発現coexpression、または瓦解用または再結合用緩衝溶液dissociationorre-associationbufferを用いた自己組立化selfassembly法によって遂行されることを特徴とする、請求項8に記載のナノカプシドを用いた有害藻類の制御方法。本発明で前述した従来の赤潮除去方法における問題点を解決することを主な課題とする。具体的に前述した課題は、赤潮誘発藻類に特異的に吸着/感染する特定のウイルスを選択して、その外部カプシドタンパク質のみをナノ粒子サイズの形態で大量産生する方法を提示することによって達成される。また本課題は、前記方法によって産生されたナノカプシドに、天然または新規な殺藻物質を搭載する方法を提示することによって、さらに効果的に達成され得る。前記課題を解決するために本発明は、1赤潮及び緑潮現象を起こす有害藻類を採取して培養する工程と、2前記培養された有害藻類に特異性があるウイルスを選別する工程と、3前記選別されたウイルスのカプシド遺伝子をクローニングする工程と、4前記クローニングされた遺伝子を組換え大腸菌または酵母で発現した後、ナノカプシドを大量産生する工程、及び5前記大量産生されたナノカプシドに殺藻物質を搭載する工程とを含むナノカプシドを用いた有害藻類制御方法を提供する。また、本発明は、前記の課題をより効果的に解決するために、前記有害藻類に特異性のあるウイルスは、カプシド内部に核酸がなく、増殖力がなく、人体有害性がなく、カプシドタンパク質が殺藻物質の伝達体にのみ用いられることを特徴とするナノカプシドを用いた有害藻類の制御方法を提供する。同時に、本発明では、ウイルスナノカプシドに搭載された殺藻物質は、キノン系化合物、チアゾリジンジオンthiazolidinedione系化合物及びマグネシウム有機クレイからなる群から選択されるいずれかひとつであることを特徴とし、前記殺藻物質をウイルスナノカプシドに搭載する方法は、遺伝子組換え方法を用いた共発現coexpression、または瓦解用または再結合用緩衝溶液で自己組立化selfassembly法によって遂行される生物学的な方法によって遂行されることを特徴とするナノカプシドを用いた有害藻類の制御方法を提供する。本発明は、赤潮または緑潮現象を起こす特定藻類に特異性があるウイルスを用いて特定藻類にのみ選択的に影響を及ぼすようにすることで、既存の黄土散布法やその他の異なる赤潮現象防止方法の問題点である海洋生態系に及ぼす副作用を根本的に無くす効果がある。以下、本発明を詳しく説明する。本発明は、1赤潮及び緑潮現象を起こす有害藻類を採取して培養する工程と、2前記培養された有害藻類に特異性があるウイルスを選別する工程と、3前記選別されたウイルスのカプシド遺伝子をクローニングする工程と、4前記クローニングされた遺伝子を組換え大腸菌または酵母で発現した後ナノカプシドを大量産生する工程、及び5前記大量産生されたナノカプシドに殺藻物質を搭載する工程とを含むナノカプシドを用いた有害藻類制御方法を提供する。前記方法において、前記赤潮及び緑潮現象を起こす有害藻類は、ヘテロカプササーキュラリスカーマHeterocapsacircularisquama、キートケロスサルスギネウムChaetocerossalsugineum、コクロディニウムポリクリコイデスCochlodiniumpolykrikoides、ヘテロシグマアカシオHeterosigmaakashiwo、シャットネラマリーナChattonellamarina及びプロトケラチウムレティキュラータムProtoceratiumreticulatumからなる群から選択されるいずれかひとつであることが好ましいが、これに限定されない。前記有害藻類は、6~9月頃南海岸や西海岸でよく出没するが、それを採取して培養することができる。前記有害藻類を培養した後、有害藻類のみを特異に感染させるウイルスを選別して分離することができる。前記ウイルスは、カプシド内部に核酸がなくて増殖力がなく、人体有害性もなく、カプシドタンパク質を殺藻物質の伝達体にのみ用いることができる。前記ウイルスは、好ましくは55nmサイズの外壁envelopeがない多面体形ウイルスnakedicosahedralnucleocapsidであり得、ヘテロカプササーキュラリスカーマRNAウイルスHeterocapsacircularisquamaRNAVirus,HcRNAV、キートケロスサルスギネウム核内封入体ウイルスChaetocerossalsugineumNuclearInclusionVirus,CsNIV及びヘテロシグマアカシオRNAウイルスHeterosigmaakashiwoRNAvirus,HaRNAVからなる群から選択されるいずれかひとつであることがさらに好ましいが、これに限定されるのではない。前記ウイルスの中でHcRNAVは、ウイルスを構成するタンパク質中のカプシドにあたる遺伝子が1,080bp配列番号1のサイズを有し、前記遺伝子によって暗号化されるタンパク質は約360個のアミノ酸からなることが好ましいが、これに限定されるのではない。前記方法において、前記殺藻物質は有害藻類にのみ特異に反応する物質であり、これを使えば異なる生物には全く被害を及ぼさないので海洋生態系の破壊を最小化することができる。前記殺藻物質は具体的に、キノン系化合物、チアゾリジンジオンthiazolidinedione系化合物またはマグネシウム有機クレイであることが好ましいが、これに限定されるのではない。前記マグネシウム有機クレイは、Al2Si2O5OH4、MgsSi2O5OH4、Al2Si4O10OH2、Mg3Si4O10OH2、KAl2AlSi3O10OH2、Ca0.25Si3.5Al0.5Al2O10OH2およびMg,Fe,Al6Si,Al4O10OH8からなる群から選択されるいずれか一つ、またはこれらの混合物から選択することができる。また、前記キノン系化合物及びチアゾリジンジオン系化合物は、下記の化学式1及び2有害藻類殺藻能があるキノン系化合物、及び化学式3有害藻類殺藻能があるチアゾリジンジオン中のいずれか一つ、またはそれらの混合物から選択することができる。ここで、Rは置換または置換されないアルキル、置換または置換されないヘテロシクロアルキル、ヘテロシクロアルケニルまたはヘテロアリールである。化学式3ここで、R1は水素、ニトロ基、アミン、アルキル、メトキシ、トリフルオロメチル、カルボキシルまたはハロゲンで、R2は水素、メチル、エチル、または置換されないヘテロシクロアルキル、ヘテロシクロアルケニルまたはヘテロアリールであり、nは0ないし5の整数である。前記殺藻物質は、それ自体としてまたはコーティング物質と結合してウイルスカプシドに搭載encapsulationすることができる。そのように搭載されたバイオナノカプシドは、対象有害藻類ヘテロカプササーキュラリスカーマなどに結合して有害藻類の成長を阻害して殺藻させられる。殺藻物質を搭載する方法は、熱またはpHの変化によるウイルスの膨脹swellingを用いる物理的搭載方法と、遺伝子組換え方法を用いた共発現coexpression、または瓦解用または再結合用緩衝溶液を用いた自己組立化selfassembly方法のような生物学的搭載方法を用いることができる。本発明者等は、前記ウイルスの中でHcRNAVを選別及び分離して、前記ウイルスのカプシド遺伝子をクローニングした後、それを組換え大腸菌または酵母で発現させてカプシドタンパク質を大量産生した。具体的に、前記1,080bpのHcRNAVカプシド遺伝子をpPICZベクターに入れてクローニングした後、酵母ピチアPichia宿主でプラスミドを大量発現させた。発現のために酵母の発現工程では、グリセロールを基質に用いて、適正微生物濃度でメタノールを追加してHcRNAVカプシドタンパク質の発現を誘導することで大量のカプシドタンパク質を作ることができた。前記大量産生されたプラスミドは、1,080bpのサイズを有する遺伝子であることを確認し図2参照、最終産生されたカプシドタンパク質は、40kDaのサイズを有するタンパク質であることを確認することができた図3参照。したがって、PCRを通じて得た前記ウイルス遺伝子は大腸菌またはピチアに使用可能なシャトルベクターに入れてクローニングし、クローニングされた遺伝子は最終的にピチア宿主の大量発酵過程を通じてカプシドタンパク質として大量産生された図1参照。前記大量産生されたナノカプシドに殺藻物質を搭載するに際して、本発明者等は有害藻類にのみ特異に反応してこれを使えば異なる生物には全く被害を及ぼさない殺藻物質として、チアゾリジンジオンthiazolidinedione,TD系化合物またはマグネシウム有機クレイを用いた。その結果、大部分のTD系化学物は有害藻類であるヘテロカプササーキュラリスカーマ、ヘテロシグマアカシオ及びコクロディニウムポリクリコイデスに対して高い殺藻効果を示した一方、無害藻類に対しては非常に低い毒性を示した表1、表2、図8及び図9参照、マグネシウム有機クレイの場合にも有害藻類のみを選択的に制御することが示された表4、図12参照。それで、本発明は、有害藻類のみを選択的に制御する効果を有する殺藻物質を有害藻類に特異的に結合する特定ウイルスのカプシド内に搭載することで、他の無害藻類に対する毒性なしに有害藻類のみを選択的に制御することができるので、これは海洋生態系破壊を最小化させることができる有害藻類制御方法として有用に用いることができる。以下、本発明を下記の実施例によってより詳細に説明する。但し、下記の実施例は本発明の内容を例示するだけのものであって、発明の範囲が実施例によって限定されるのではない。有害藻類に特異性があるウイルスのカプシド遺伝子の大量産生前記報告された有害藻類中の渦鞭毛藻類の一種であるヘテロカプササーキュラリスカーマHeterocapsacircularisquamaを2009年8月2日から9月25日まで全羅南道麗水の沖合で分離及び選別した。選別された藻類をf/2培地に接種した後、20°Cで培養した。HcRNAV109ウイルスの野生型カプシド遺伝子情報は、GenbankNo.AB218609.1から得、1,080bpの遺伝子を酵母であるピチアPichiaで最適発現されるように変形させた後、pPICZAプラスミドに入れて最終的にpPICZA-CPベクターを製造した。クローニングしたpPICZA-CPベクターをピチアパストリスPichiapastoris宿主に挿入した後、ゼオシンzeocin-YPD培地上で1次スクリーニングして分離した宿主をメタノール誘導培地で培養してHcRNAV遺伝子の発現を確認して40kDaの分子量を有するタンパク質を大量産生することができる組換え菌株を確保した。前記大量増殖されたプラスミドplasmidは、図2に示したように1,080bpのサイズを有する遺伝子であることを確認し図2、最終産生されたカプシドタンパク質は、40kDaのサイズを有するタンパク質であることを確認することができた図3。すなわち、該当のウイルス遺伝子は、PCRを通じて獲得が可能であり、この獲得された遺伝子は大腸菌またはピチアに使用可能なシャトルベクターに入れてクローニングすることができ、このクローニングされた遺伝子は最終的にピチア宿主の大量発酵過程を通じて産生することができることを確認した。発酵は、グリセロールを炭素源として流加培養で進行して、40時間以後に3.6ml/hのメタノールを供給しながらタンパク質発現を誘導した。ウイルスカプシドに殺藻物質を搭載して散布遺伝子組換え方法を用いてヘテロカプササーキュラリスカーマRNAウイルスHeterocapsacircularisqumaRNAvirus,HcRNAV及びキートケロスサルスギネウム核内封入体ウイルスChaetocerossalsugineumnuclearinclusionvirus,CsNIVのカプシド遺伝子をそれぞれピチアで共発現coexpressionした後、NiセファロースNiSepharoseカラムを用いて親和性クロマトグラフィーaffinitychromatography方法で精製した。精製されたウイルスカプシドタンパク質の自己組立化selfassemblyを増大させるために蒸留水で1日間透析した。自己組立されたカプシドタンパク質の宿主特異的結合及び殺藻物質の搭載能力を調査するために、まずカプシドタンパク質を瓦解用緩衝溶液dissociationbuffer,10mMTris-HCl,150mMNaCl,10mMEGTA,pH8.5に1時間の間露出させて解離させた。解離されたカプシドタンパク質にTD系殺藻物質と特性が類似の蛍光物質FITCを添加した後、再結合緩衝溶液reassociationbuffer,10mMTris-HCl,150mMNaCl,1mMCaCl2,pH8.5で1日間透析して蛍光物質が搭載されたかどうかを確認することで搭載能を調査した。また、蛍光物質が搭載されたカプシドタンパク質を有害藻類と混ぜた後、3時間の間培養して蛍光顕微鏡下でカプシドタンパク質の宿主特異的結合を調査した。カプシドタンパク質に搭載されないFITCの藻類に対する非特異的結合を防止するために1日間さらに透析した後、タンパク質電気泳動を実施して蛍光物質が搭載されたカプシドタンパク質のみを確認した。海洋環境と同一条件を維持するために海水に保存した藻類にカプシドタンパク質を処理して3時間の間培養した。藻類に付着しないカプシドタンパク質を除去するためにフィルター滅菌された海水を用いて三回洗浄した後、FITCが搭載されたカプシドタンパク質がキートケロスサルスギネウムに対して特異的に結合するかどうかを緑色FITCフィルターが装着された蛍光顕微鏡下で調査した。その結果、図7に示したように、蛍光物質FITCが搭載されたカプシドタンパク質の宿主特異的結合をキートケロスサルスギネウムを対象に調査した結果、FITCが搭載されたカプシドタンパク質処理後、キートケロスサルスギネウムの赤色フィルター条件で藻類の自己蛍光autofluorescenceAとFITC緑色フィルター条件で蛍光イメージA’が示された。すなわち、キートケロスサルスギネウム細胞表面で濃い緑色蛍光FITCが観察され、これを基にカプシドタンパク質が宿主特異的に結合するということが確認された。一方、対照群に蛍光物質FITCのみを藻類に処理して同一条件で調査した結果、赤色の藻類の自己蛍光Bは観察された一方、FITC緑色蛍光B’は全く観察されなかった。これは産生したカプシドタンパク質が藻類に特異的に結合するということを示す図7。有害藻類に対する選択的な殺藻効果殺藻物質として下記の化学式4または5のチアゾリジンジオンthiazolidinedione,TD系化合物を用いて殺藻能スクリーン実験を遂行した。選択された有害藻類7種を対象に135種のTD化合物を濃度別に処理することで、殺藻能スクリーニングを進行した。マイクロプレートに同量の細胞を入れて0.05、0.1、1、2、5、10、20、50、100μMの濃度で処理した後、3日後にビルケルチュルク血球計数盤とセジウィックラフターSedgwick-Rafterカウンティングチャンバーを用いて細胞密度を測定した。測定された細胞密度で減少率を計算して正確なIC50値を測定した。減少率=1-Tt/Ct×100T:処理細胞密度、C:対照群の細胞密度その結果、下記の表1及び表2に示されたように、大部分のTD系化合物は有害藻類に対しては高い殺藻効果を示した一方、無害藻類に対しては非常に低い毒性を示した。その中でも化合物17が、無害藻類に対しては毒性を示さずに有害藻類に対しては最も高い殺藻効果を示した表1及び表2。また、図8に示されたように、1μMのTD系化合物17をコクロディニウムポリクリコイデスCochlodiniumpolykrikoidesに処理した後、時間によって細胞の変化を観察した結果、8個の細胞が結合されていた正常な形態が、処理後2時間が経過してc各節部分が解け始め、4時間が経つと各細胞が離れて、5時間が経つとf離れた細胞が裂けて死滅する現象を示した図8。一方、図9に示されたように、1μMのTD系化合物17をヘテロシグマアカシオHeterosigmaakashiwoに処理した後、時間によって細胞の変化を観察した結果、処理後2時間が経過して細胞壁部分が裂けて細胞内物質が細胞外に流れ出ながら死滅する現象を示した図9。マグネシウム有機クレイの合成及び分析本願発明で用いられるまた一つの殺藻物質である有機クレイは、金属塩化物試薬として塩化マグネシウム水和物MgCl2,6H2O,Junsei98を用い、作用基がついたシラン化合物は3-アミノプロピルトリエトキシシラン3-aminopropyl-triethoxysilane,APTESAldrich98を用い、溶剤はエチルアルコール95、試薬用、1N-NaOH溶液、アンモニア水30、試薬用を用いて製造した。反応から得た生成物である有機クレイの合成有無を調べるために、次のような機器を用いて分析した。固体試料は、29Si-HPDECNMRAvance400,Bruker,Germanyを用いてSi-OまたはSi-OH構造分析を行ない、D2Oに溶解するMetal-APTES化合物の1H-NMRJEOL,300MHz,D2O分析を通じてアミノプロピル末端グループがクレイに導入されたことを確認した。そして、FT-IRNICOLET6700,Thermoscientific,米国分析は、ブロム化カリウムKBrペレットで製造して分析し、作用基すなわち、アミノプロピル-CH23NH2の導入有無を確認した。X線回折XRDパターンは、X線回折計X’PertPRO,PANalyticalB.V.を用いて得、固体パウダー試料をCuKαradiation20mA及び40kV、2θは2 ゚から70 ゚まで2 ゚/分の速度で測定して結晶の構造を確認した。透過及び走査電子顕微鏡の分析から有機クレイの形態morphologyを確認し、EDXを通じて金属/Si成分を分析して有機クレイの合成有無を確認した図11。塩化マグネシウム水和物1.68gMgCl26H2O,8.3mmolを50mlのエチルアルコールに溶解した溶液にAPTES2.6ml11.1mmolを強く撹拌しながら徐々に加えると沈殿物が析出して、この反応物を室温で24時間反応させた。白色の沈殿物は遠心分離後エチルアルコールで3回以上洗浄した後、乾燥した。収得率は96以上であり、IR、NMR、SEM、TEM、XRDなどを分析して合成有無を確認した。そして報告された方法どおりに水酸化ナトリウム溶液1NNaOH,10mlを触媒に用いて合成したが、反応物のpHが約9.87で、NaOH水溶液を入れない反応物のpH8.15よりは高いpH値を維持した。しかし、生成物の収得率の差は大きくなかった。その結果、図10で示されたように、FT-IR-スペクトルと1H-NMRでみると、Mg-APTESにアミノプロピルが導入されたことを確認することができた図10。構造特性のデータは、下記の表3に要約した。末端の導入基NH2伸縮震動は、3600~3200cm-1、NH2曲げ振動1658cm-1で強い吸収帯を、Si-O-Sistretching1020cm-1で示すことから有機クレイが合成されたことを確認した表3及び図11。マグネシウム有機クレイの殺藻効果マグネシウム有機クレイを有害藻類3種ヘテロカプササーキュラリスカーマ、ヘテロシグマアカシオ及びコクロディニウムポリクリコイデスに0.2mg/mlの濃度で処理した時、対照群に比べて80以上の殺藻能を示すことを確認した。一方、無害藻類4種{ナヴィクラペリクローサNaviculapelliculosa、ファエオダチラムPhaeodactylumEPV、ナンノクロロプシスNannochloropsisWT、アンフィディニウム属Amphidiniumsp.}には、最大20の殺藻能を示すことを確認した。また、商業用ミネラルクレイを同じ有害藻類に処理した時、有機クレイより効能が落ちることを確認した。これを通じて、低い濃度での有機クレイを用いて有害藻類のみを選択的に制御することが可能であることを確認した図12。また、表4のIC50値をみるとマグネシウム有機クレイが類似の化合物である黄土あるいは塩化アンモニウムより優れた値を示すことが分かり、製造に用いられた塩化マグネシウムとの比較でも低いIC50値を示し、高い殺藻能を有していることが証明された表4。"