"デアセチルサイトカラシンC、Eupenicilliumludwigiiの培養物、及び、Talaromycestrachyspermusの培養物からなる群より選択された少なくとも1種を含むことを特徴とする骨髄幹細胞の誘引剤。デアセチルサイトカラシンC、Eupenicilliumludwigiiの培養物、及び、Talaromycestrachyspermusの培養物からなる群より選択された少なくとも1種を含む骨髄幹細胞の誘引剤により骨髄幹細胞を誘引することを特徴とする骨髄幹細胞の誘引方法。しかしながら、この種の分化誘導剤は、骨髄幹細胞を所定の組織細胞へと分化させる性能を有するものの、骨髄幹細胞を誘引する性能、具体的には例えば、血流にのって体内を循環している骨髄幹細胞を所定の体内組織へ誘引する性能が、必ずしも十分なものではないという問題がある。本発明は、上記の問題点等に鑑み、骨髄幹細胞を誘引できる骨髄幹細胞の誘引剤を提供することを課題とする。また、前記誘引剤により骨髄幹細胞を誘引する骨髄幹細胞の誘引方法を提供することを課題とする。本発明に係る骨髄幹細胞の誘引剤は、デアセチルサイトカラシンC、エウペニシリウムルドウィギイEupenicilliumludwigiiの培養物、及び、タラロマイセストラキスペルムスTalaromycestrachyspermusの培養物からなる群より選択された少なくとも1種を含むことを特徴としている。本発明に係る骨髄幹細胞の誘引方法は、前記誘引剤により骨髄幹細胞を誘引することを特徴としている。本発明の骨髄幹細胞の誘引剤は、骨髄幹細胞を誘引できるという効果を奏する。以下に、本発明に係る骨髄幹細胞の誘引剤の実施形態について説明する。本実施形態の骨髄幹細胞の誘引剤は、デアセチルサイトカラシンC、エウペニシリウムルドウィギイEupenicilliumludwigiiの培養物、及び、タラロマイセストラキスペルムスTalaromycestrachyspermusの培養物からなる群より選択された少なくとも1種を含むものである。前記デアセチルサイトカラシンCは、下記式1の分子構造を有する化合物である。前記骨髄幹細胞の誘引剤に含まれるデアセチルサイトカラシンCの濃度は、特に限定されず、該濃度としては、例えば、0.001~100重量が挙げられる。前記デアセチルサイトカラシンCを含む骨髄幹細胞の誘引剤としては、製造が比較的容易であり骨髄幹細胞の誘引性能に優れるという点で、子のう菌類微生物に分類される黒彊病菌メタリジウムアニソプリエMetarhiziumanisopliaeを培養することにより生成された生成物を含むものが好ましい。即ち、黒彊病菌メタリジウムアニソプリエMetarhiziumanisopliaeの培養物が好ましい。前記エウペニシリウムルドウィギイEupenicilliumludwigiiの培養物は、子のう菌類微生物に分類されるエウペニシリウムルドウィギイEupenicilliumludwigiiを培養することにより生成された生成物を含むものである。前記タラロマイセストラキスペルムスTalaromycestrachyspermusの培養物は、不整子のう菌類微生物に分類されるタラロマイセストラキスペルムスTalaromycestrachyspermusを培養することにより生成された生成物を含むものである。上述したエウペニシリウムルドウィギイEupenicilliumludwigii又はタラロマイセストラキスペルムスTalaromycestrachyspermusの培養物は、培養後の培地及び菌体を含む粗培養物、その希釈物若しくは濃縮物、又は、抽出溶媒を用いて培養後の培地及び菌体に抽出処理を施した培養抽出物などの態様で用いられ得る。好ましくは、培養により生成された生成物の含有濃度がより高くなり前記誘引剤の誘引性能がより優れたものになり得るという点で、前記培養抽出物の態様で用いられることが好ましい。前記培養抽出物の態様としては、抽出溶媒により得られた抽出液、その希釈液、その濃縮液、又はその抽出溶媒を除去した乾燥物などが挙げられる。具体的には、例えば、溶液状、ペースト状、ゲル状、粉末状のものなどが挙げられる。前記骨髄幹細胞の誘引剤に含まれる培養物の濃度は、特に限定されず、通常、乾燥物換算で0.001~20重量である。なお、乾燥物換算とは、培養後の培地及び菌体に含まれる培養生成物の乾燥物に換算することである。乾燥物の重量は、所定量の培養後の培地及び菌体に対して抽出溶媒を用いて抽出処理を施したものから培地、菌体、及び抽出溶媒を除いた残渣の重量により求める。次に、前記骨髄幹細胞の誘引剤を製造する方法について説明する。前記デアセチルサイトカラシンCを含む骨髄幹細胞の誘引剤の製造方法は、特に限定されるものではなく、該誘引剤は、例えば、黒彊病菌Metarhiziumanisopliaeを培養することによりデアセチルサイトカラシンCを生成させて製造することができる。具体的には、前記デアセチルサイトカラシンCを含む骨髄幹細胞の誘引剤は、例えば、培地の存在下で黒彊病菌Metarhiziumanisopliaeを培養し、培養後の培地及び菌体に抽出処理を施して培養抽出物を得ることにより調製でき、必要に応じて、デアセチルサイトカラシンC濃度を高めるべく、培養抽出物にさらに精製処理を行うことにより製造することができる。より具体的には、例えば、実施例に記載されている方法によって製造することができる。前記培養においては、従来公知の一般的な方法を採用することができ、例えば、固体状の培地を用いて培養する方法、液体状の培地を用いて培養する方法などを採用することができる。前記培地を構成する成分は、特に限定されるものではなく、該成分としては、例えば、微生物を増殖させ得る一般的な有機化合物や無機塩類などを用いることができる。前記培養においては、培養時間、培養温度などの培養条件が適宜調整される。前記抽出処理の方法としては、例えば、抽出溶媒を用いて培養後の培地及び菌体からデアセチルサイトカラシンCを抽出する溶媒抽出法などを採用することができる。該溶媒抽出法としては、従来公知の一般的な方法を採用することができる。具体的には、例えば、培養後の培地と菌体と抽出溶媒とを混合して懸濁液を調製し、懸濁液を遠心分離により分離して、デアセチルサイトカラシンCを含む上清液を採取する方法などを採用することができる。前記溶媒抽出法における抽出溶媒としては、水又は有機溶媒を用いることができる。前記有機溶媒としては、具体的には例えば、メタノール、エタノール、ブタノール、プロパノールなどの脂肪族1価アルコール;グリセリン、プロピレングリコール、1,3-ブチレングリコールなどの脂肪族多価アルコール;アセトンなどのケトン類;ジエチルエーテル、ジオキサン、アセトニトリル、酢酸エチルエステルなどのエステル類;キシレン、ベンゼン、トルエンなどの芳香族類;クロロホルムなどハロゲン化アルキル類などを用いることができる。前記抽出溶媒は、1種が単独で、又は2種以上が混合されて用いられる。混合されてなる混合抽出溶媒の混合比は、特に限定されるものではなく、適宜調整される。前記抽出溶媒としては、デアセチルサイトカラシンCがより抽出されやすいという点で、アセトンと水との混合抽出溶媒が好適に用いられる。前記精製処理の方法としては、従来公知の一般的な方法を採用することができる。好ましくは、高速液体クロマトグラフィーHPLCなどのカラムクロマトグラフィーを採用する。具体的には、前記精製処理の方法としては、例えば、上述のように抽出処理を施した培養抽出物を高速液体クロマトグラフィーHPLCによって複数のフラクションに分画し、デアセチルサイトカラシンCの濃度がより高まったフラクションを得る方法を採用することができる。前記高速液体クロマトグラフィーHPLCによって複数のフラクションに分画する方法においては、骨髄幹細胞の誘引剤に含まれるデアセチルサイトカラシンCの濃度がさらに高まり得るという点で、デアセチルサイトカラシンCの濃度が高まったフラクションに対して同様な分画操作を再度行うことが好ましい。なお、前記高速液体クロマトグラフィーHPLCによる精製処理を行う前には、上述のように抽出処理を施した培養抽出物を粗精製することが好ましい。具体的には、例えば、固体状の担体が樹脂製シリンジに保持されてなる固相抽出カートリッジを用いて粗精製することが好ましい。以上のようにして、デアセチルサイトカラシンCを含む骨髄幹細胞の誘引剤として、黒彊病菌Metarhiziumanisopliaeの培養物を製造することができ、さらに、精製されたデアセチルサイトカラシンCを製造することができる。一方、エウペニシリウムルドウィギイEupenicilliumludwigiiの培養物、又は、タラロマイセストラキスペルムスTalaromycestrachyspermusの培養物を含む骨髄幹細胞の誘引剤は、エウペニシリウムルドウィギイEupenicilliumludwigii、又は、タラロマイセストラキスペルムスTalaromycestrachyspermusを従来公知の一般的な方法によって培養することにより製造することができる。エウペニシリウムルドウィギイEupenicilliumludwigiiの培養物、又は、タラロマイセストラキスペルムスTalaromycestrachyspermusの培養物を含む骨髄幹細胞の誘引剤の製造においては、上述した培養の方法と同様の方法を採用することができる。また、上記の培養物を含む骨髄幹細胞の誘引剤の製造においては、誘引剤の細胞誘引性能がより優れたものになり得るという点で、上述した抽出処理と同様の抽出処理を実施してなる培養抽出物を調製することが好ましい。該抽出処理のために用いる抽出溶媒としては、上記の培養物を含む誘引剤が骨髄幹細胞をより誘引できるものになり得るという点で、前記脂肪族1価アルコールが好ましく、ブタノールがより好ましい。続いて、本発明の骨髄幹細胞の誘引方法の実施形態について説明する。本実施形態の骨髄幹細胞の誘引方法は、前記骨髄幹細胞の誘引剤により骨髄幹細胞を誘引するものである。骨髄幹細胞は、骨髄組織に含まれており、さらに骨髄組織内で分化したり又は血流にのって骨髄組織から他の体内組織へ移動したりし得る。前記骨髄幹細胞としては、軟骨細胞、脂肪細胞、筋肉細胞などの中胚葉性組織の細胞へ分化し得る骨髄間葉系幹細胞、赤血球や白血球などの血液細胞へ分化し得る造血幹細胞などが挙げられる。前記骨髄幹細胞のなかでも骨髄間葉系幹細胞は、中胚葉性組織の細胞に分化するだけでなく、神経などの外胚葉性組織、肝臓などの内胚葉性組織の細胞へも分化し得る。本発明の誘引方法において誘引される骨髄幹細胞としては、誘引された後に、より多様な細胞に分化し得るという点で、骨髄間葉系幹細胞が好ましい。前記骨髄幹細胞の誘引方法においては、例えば、生体外において、又は生体において前記骨髄幹細胞の誘引剤により骨髄幹細胞を誘引することができる。具体的には、生体外での骨髄幹細胞の誘引方法においては、例えば、厚み方向に貫通する微細孔を有するメンブレン膜を備えた装置を用い、メンブレンの一方側に骨髄幹細胞を配し、他方側に前記骨髄幹細胞の誘引剤を配し、所定時間をおいて骨髄幹細胞をメンブレンの他方側へ誘引する方法などを実施することができる。骨髄幹細胞の誘引の程度は、他方側へ誘引された骨髄幹細胞を染色し、染色度を測定することにより評価できる。また、生体外での骨髄幹細胞の誘引方法においては、例えば、スライドグラス上に播種した骨髄幹細胞の一部を掻き取り、掻き取った部分に骨髄幹細胞の誘引剤を含む培地を加えて培養することにより、掻き取った部分へ骨髄幹細胞を誘引する方法などを実施することができる。骨髄幹細胞の誘引の程度は、掻き取った部分における骨髄幹細胞の増殖を確認することにより評価できる。このような生体外での骨髄幹細胞の誘引方法は、比較的簡便に実施できることから、例えば、後述する生体での骨髄幹細胞の誘引方法における誘引剤の最適濃度を決定する目的で予備実験的に実施することができる。一方、生体での骨髄幹細胞の誘引方法においては、例えば、前記骨髄幹細胞の誘引剤を含む水性ゲルを通常のマウスの皮下に埋め込み、緑色蛍光タンパク質GreenFluorescentProtein,以下GFPともいうを発現させたマウスの骨髄幹細胞をこのマウスの静脈に注入し、所定期間マウスを飼育することにより、骨髄幹細胞を水性ゲルに誘引する方法などを実施することができる。骨髄幹細胞の誘引の程度は、水性ゲルにおける蛍光の強度を測定することにより評価できる。また、生体での骨髄幹細胞の誘引方法においては、例えば、GFPを発現させたマウスの骨髄幹細胞を、創傷モデルマウスの骨髄に移植するとともに、該マウスの創傷部に前記骨髄幹細胞の誘引剤を塗布することにより、創傷部にGFPマウス由来の骨髄幹細胞を誘引する方法などを実施することができる。骨髄幹細胞の誘引の程度は、創傷部における蛍光の強度を測定することにより評価できる。さらに、生体での骨髄幹細胞の誘引方法においては、例えば、所定の体内組織に骨髄幹細胞の誘引剤を含有させる処置を施し、その組織に骨髄幹細胞を誘引する方法などを実施することができる。より具体的には、例えば、皮膚の表皮組織に前記骨髄幹細胞の誘引剤を塗布などにより含有させて、血液中に存在する骨髄間葉系幹細胞を表皮組織に誘引する方法などを実施することができる。なお、生体での誘引方法において骨髄幹細胞が誘引されて来る体内組織としては、表皮組織の他に、筋肉組織、軟骨組織、肝臓組織などの各種組織が挙げられる。生体での骨髄幹細胞の誘引方法は、例えば、骨髄幹細胞を各種の組織細胞へ分化させる前に、骨髄幹細胞をその組織へ集積させる目的で実施することができる。前記骨髄幹細胞の誘引方法は、ヒトの生体又はヒト以外の動物の生体において実施することができる。好ましくは、ヒトの生体において、具体的には例えば美容上の目的で、非治療的に実施する。前記骨髄幹細胞の誘引方法においては、前記骨髄幹細胞の誘引剤を希釈して使用することができる。希釈するための液としては、特に限定されるものではなく、例えば、水、生理食塩水、骨髄幹細胞の培養液などを用いることができる。前記デアセチルサイトカラシンCを含む骨髄幹細胞の誘引剤は、希釈により1~1000μMのデアセチルサイトカラシンC濃度にて使用され、好ましくは、1~100μMのデアセチルサイトカラシンC濃度にて使用される。また、黒彊病菌Metarhiziumanisopliaeの培養物を含む骨髄幹細胞の誘引剤は、希釈により例えば、乾燥物換算で0.00001~0.2重量の濃度にて使用され、好ましくは、0.01~0.2重量の濃度にて使用される。また、エウペニシリウムルドウィギイEupenicilliumludwigiiの培養物、又は、タラロマイセストラキスペルムスTalaromycestrachyspermusの培養物を含む骨髄幹細胞の誘引剤は、希釈により例えば、乾燥物換算で0.00001~0.2重量の濃度にて使用され、好ましくは、0.01~0.1重量の濃度にて使用される。本実施形態の骨髄幹細胞の誘引剤及び骨髄幹細胞の誘引方法は、上記例示の通りであるが、本発明は、上記例示の骨髄幹細胞の誘引剤及び骨髄幹細胞の誘引方法に限定されるものではない。また、本発明では、一般の骨髄幹細胞の誘引剤及び骨髄幹細胞の誘引方法において採用される種々の形態を、本発明の効果を損ねない範囲で採用することができる。次に、実施例を挙げて本発明をさらに詳しく説明するが、本発明はこれらに限定されるものではない。実施例1下記に示すように、デアセチルサイトカラシンCを含む誘引剤を製造した。即ち、黒彊病菌メタリジウムアニソプリエMetarhiziumanisopliaeを培養し、培養後の培地及び菌体を含む粗培養物を得た。この粗培養物に対して抽出処理を施すことにより培養抽出物を調製した。詳細について、以下に説明する。まず、メタリジウムアニソプリエMetarhiziumanisopliaeの前培養を行うために、グリセロールストックから取り出した種菌を下記の培養条件に従って培養した。前培養条件:温度28°C、40日間前培養培地組成:下記に示すLCA寒天培地グルコース1gKH2PO41gMgSO47H2O0.2gKCl0.2gNaNO32gバクト酵母エキス0.2gBectonDickinsonandCompany社製寒天和光純薬社製20g水道水1LNaOH64.8mg前培養後、菌糸体を含む寒天培地をストローで打ち抜いた。一方、3.5mLの滅菌水道水を15mL容量の遠心管に分注した。打ち抜いた寒天培地の5片を遠心管に入れ、綿棒で寒天培地を押し潰して懸濁液を調製した。続いて、本培養のための培地として、50mL容量の遠心管中に下記組成の本培養培地を作製し、本培養用の遠心管に1mLの上記懸濁液を添加し、下記の培養条件で本培養した。本培養条件:温度28°C、2週間本培養培地組成:下記に示す固形状培地野菜ジュース10mLキャンベルスープカンパニー社製商品名V8ジュースオートミール3g雪印乳業クエーカー社製本培養後の遠心管に抽出溶媒としての80容量アセトン水溶液を加え、粗培養物に対して抽出溶媒による抽出処理を行った。詳しくは、遠心管に抽出溶媒を加えた後、遠心管を激しく上下に振って内容物を撹拌し、室温で30分間静置した。その後、遠心管に対して回転数3500rpm、23°Cで5分間の遠心分離操作を行い、遠心分離後の上清約15mLをデカンテーションにより回収した。続いて、上清をドラフトで約15時間静置することにより抽出溶媒を揮発させて濃縮した後、濃縮された上清が約10mLになるまで-20°Cで保存した。保存した後の上清をマイクロチューブに入れ、13,000rpmの遠心分離により、沈殿物と沈殿物以外のサンプル液とを得た。サンプル液の225.6μL本培養ブロス200μLに相当を遠心エバポレーターで乾固させ、-20°Cで保存した。乾固させたサンプルを80容量メタノール水溶液100μLに溶解し、ボルテックスミキサーを用いて30分間懸濁させた後、13,500rpm、4°C、5分間の遠心分離により上清を得て、培養抽出物を調製し、誘引剤を製造した。該誘引剤は、溶媒を除去したあとの乾燥物重量から計算すると、乾燥物を15重量含むものであった。以上のようにして実施例1の骨髄幹細胞の誘引剤を製造した。実施例1の誘引剤がデアセチルサイトカラシンCを含むことは、続く実施例2の誘引剤を核磁気共鳴法NMR、質量分析MS法により解析した結果によって示す。実施例2実施例1の骨髄幹細胞の誘引剤に対して、さらに精製処理を施すことにより実施例2の誘引剤を製造した。詳しくは、実施例1の骨髄幹細胞の誘引剤に対して固相抽出カートリッジを用いて粗精製の処理を施し、該処理を施した後に90容量アセトニトリルで溶出させたものに対して、さらに高速液体クロマトグラフィーHPLCによって精製処理を施した。詳細について、以下に説明する。粗精製固相抽出カートリッジ商品名OasisHLBウォーターズ社製200mg6cc続いて、HPLCを用いた精製処理によって、粗精製された液を25のフラクションに分画した第1分画操作。第1分画操作におけるHPLC条件を下記に示す。HPLC条件第1分画操作分画:リテンションタイム3分以降、10分間隔で分画カラム:C18逆相カラム品名:Cosmosil5C18ARII250×10mmナカライテスク社製カラム温度:25°C移動相流速:4mL/分移動相グラジエント条件:0分-10の1ギ酸水溶液/50水/40アセトニトリル混合液23分-10の1ギ酸水溶液/90アセトニトリル混合液28分-アセトニトリル100第1分画操作によって得られた各フラクションについては、生体外における細胞誘引試験後述を行い、最も細胞誘引性能に優れた分画6番目について、HPLCを用いてさらなる分画操作を行った第2分画操作。第2分画操作におけるHPLC条件を下記に示す。HPLC条件第2分画操作分画:リテンションタイム0分以降、10分間隔で計25のフラクションに分画カラム:C18逆相カラム品名:Cosmosil5C18ARII250×46mmナカライテスク社製カラム温度:25°C移動相流速:0.85mL/分移動相グラジエント条件:0分-10の1ギ酸水溶液/50水/40アセトニトリル混合液20分-10の1ギ酸水溶液/20水/70アセトニトリル混合液22分-アセトニトリル100上記の第2分画操作で得られたフラクションのうち、後述する生体外における細胞誘引試験において最も細胞誘引性能に優れたもの10番目の溶媒を除去し、固形物白色粉体を得て、実施例2の誘引剤を製造した。実施例2の誘引剤で製造した白色粉体については、1次元及び2次元の核磁気共鳴法1H-NMR、13C-NMR、及び、質量分析法MSによって、デアセチルサイトカラシンCであると同定した。測定方法の詳細について、以下に示す。<核磁気共鳴法>測定条件測定装置:日本電子社製装置名JNM-ECA溶媒:CD3OD1次元NMR:1H-NMR600MHz13C-NMR150MHz2次元NMR:H-HCOSY600MHzHMQC600MHzHMBC600MHz1H-NMR、13C-NMR、H-HCOSY、HMQC、HMBCの各スペクトルデータをそれぞれ図1~図5に示す。<質量分析法>測定条件測定装置:アプライドバイオシステムズ社製装置名VoyagerDESTR測定方法:マトリックス支援レーザー脱離イオン化飛行時間型質量分析MALDI-TOF-MS正イオン検出マトリックス:α-シアノ-4-ヒドロキシケイ皮酸スペクトルデータを図6に示す。実施例2で得られた物質の1次元NMRアサインデータと、デアセチルサイトカラシンCの1次元NMRアサインデータとの対照表を図7に示す。図7におけるデアセチルサイトカラシンCの1次元NMRアサインデータは、FujiiYらJNatProd200063132135を参照した。また、図7中にを付したものは、溶媒の影響による明瞭でないシグナルであると判断した。さらに、デアセチルサイトカラシンCの分子構造に位置番号が付与されたものを図8に示す。実施例3エウペニシリウムルドウィギイEupenicilliumludwigiiを培養することにより、培養後の培地及び菌体を含む粗培養物を得た。粗培養物に対して抽出処理を施して培養抽出物を得て、骨髄幹細胞の誘引剤を製造した。その詳細について以下に説明する。即ち、まず、グリセロールストックから取り出した菌体を傾斜培地麦芽エキス寒天培地MA培地に植え付け、1週間の前培養を行った。次に、前培養後の菌体を白金耳で取り出し、5mLの滅菌生理食塩水に懸濁させた後、下記組成の培地が入った150mL容量のポリプロピレン製フラスコ内に懸濁液の全部を入れて植菌し、静置培養25°C、12日間した。培地組成そば粉10gSB溶液10mL計20g/フラスコSB溶液の組成酒石酸ナトリウム0005KH2PO40005MgSO47H2O0005FeSO47H2O00005ZnSO47H2O00005酵母エキスオリエンタル酵母社製001水残部続いて、培養後の培地及び菌体の混合液粗培養物240μLに対して、抽出溶媒としての100ブタノール100μLを用いて抽出処理を施し、遠心分離により分離した上清を凍結乾燥して溶媒を除去した。さらに、ブタノールで抽出した後の凍結乾燥物に50μLのメタノールを加え、ボルテックスミキサーによって30分間撹拌して懸濁させた後、13,500rpm、4°C、5分間の遠心分離によって上清を得た。このようにして、エウペニシリウムルドウィギイEupenicilliumludwigiiの培養抽出物を含む骨髄幹細胞の誘引剤を製造した。該誘引剤は、溶媒を除去したあとの乾燥物重量から計算すると、乾燥物を2重量含むものであった。実施例4エウペニシリウムルドウィギイEupenicilliumludwigiiに代えて、タラロマイセストラキスペルムスTalaromycestrachyspermusを用いた点以外は、実施例3と同様にして骨髄幹細胞の誘引剤を製造した。該誘引剤は、乾燥物を2重量含むものであった。製造した各実施例の骨髄幹細胞の誘引剤を使用し、生体外における細胞誘引試験による評価を行った。図9は、該評価方法の様子を模式的に示したものである。以下、図9を参照しながら評価方法の詳細を説明する。<生体外における細胞誘引試験>実施例2のデアセチルサイトカラシンCの濃度が6.3μM、21μM、及び63μMの濃度になるように、また、実施例1,3及び4の誘引剤が0.01容量、0.1容量、又は1容量になるように希釈し、試験用サンプルを調製した。希釈には、ダルベッコ変法イーグル培地[DMEMFBS-、P/S-]を用いた。ここで、[]内におけるFBSは、10ウシ胎児血清を示し、P/Sは、100ユニットペニシリン及び0.1mg/mLストレプトマイシンを示している。また-の記号は、配合していないことを示している。一方、陰性対照サンプル以下、N.C.ともいうとして、DMEMFBS-、P/S-を用意し、陽性対照サンプル以下、P.C.ともいうとして、20ng/mLPDGF-BB血小板由来成長因子PEPROTECH社製を用意した。また、マウス骨髄間葉系幹細胞以下、mMSCともいうをコンフルエントまで培養して回収し、10FBS/DMEMP/S-で1×107cells/mLとなるように懸濁し、細胞懸濁液を用意した。次に、複数の独立したウェルを備え、図9aに示すようにメンブレンMによりウェルが上部ウェルPと下部ウェルQとに仕切られているボイデンチャンバーNeuroProbe社製を用意した。各試験用サンプルのいずれか1種と陰性対照サンプル及び陽性対照サンプルとが同一のボイデンチャンバーにおいて試験できるように設定し、該チャンバーの各下部ウェルに各サンプルをそれぞれ28μLずつアプライした。なお、ボイデンチャンバーのメンブレンとしては、商品名PolycarbonateMembranesNeuroProbe社製細孔サイズ8μmを用いた。続いて、上部ウェルPに上記細胞懸濁液を50μLずつ播種し、37°C、5CO2の条件下で4時間培養した図9bを参照。4時間培養後、図9cに示すように、移動していないmMSCを付属のフィルターワイパーRではぎ取り、メンブレンの下側へ移動したmMSCのみをディフクイック染色Sysmex社製キットを使用により染色した。そして、染色像をデジタル化してコンピュータに取り込み、画像を黒と白に2値化すべく青色に染色された部分が白色になるように変換したうえで、各ウェル範囲内の輝度の平均値を画像編集ソフトウェア商品名フォトショップの機能を用いて測定した。陰性対照サンプルおよび陽性対照サンプルにおける輝度を各試験用サンプルにおける輝度と比較することにより、骨髄幹細胞の誘引剤のmMSC誘引活性を評価した。実施例1の誘引剤における評価結果を、染色像及び輝度のグラフによって図10aに示す。また、実施例2の誘引剤における評価結果を同様に図10bに示す。実施例3及び4の誘引剤における評価結果を同様にそれぞれ図11a,bに示す。さらに、参考実験として、陽性対照サンプルであるPDGF-BBの濃度を変えて上記と同様の方法で細胞誘引試験を行った。その結果を図12に示す。実施例2における第1分画操作によって分画した各フラクション、陰性対照サンプル、及び陽性対照サンプルにおける試験の評価結果について、縦軸に輝度を示したグラフを図13に示す。また、実施例2における第2分画操作によって分画した各フラクション、陰性対照サンプル、及び陽性対照サンプルにおける試験の評価結果について、縦軸に輝度を示したグラフを図14に示す。<マウスの生体における細胞誘引試験>実施例1で製造した誘引剤メタリジウムアニソプリエMetarhiziumanisopliaeの培養抽出物、及び、実施例2で製造した誘引剤デアセチルサイトカラシンCを使用して、生体における細胞誘引試験を行った。試験は、マトリゲルプラグ法を採用することにより行った。試験方法の詳細を以下に示す。実施例1の誘引剤が1.7重量濃度0.03重量のデアセチルサイトカラシンC濃度に相当となるように、また、実施例2の誘引剤が80μM濃度のデアセチルサイトカラシンC濃度となるように、それぞれの誘引剤及び細胞外基底膜のゲルマトリゲルを混合し、樹脂性チューブに入れた。続いて、上記のごとく用意したチューブを7週齢のC57BL/6マウスの背部左右に移植し、2週間飼育した。飼育後、移植したチューブを取り出し、チューブ内のマトリゲルを溶解させてチューブ内の細胞を回収した。さらに、陰性対照サンプルとして、上記マトリゲルのみを入れた同様のチューブを用意し、また、陽性対照サンプルとして、500ng/mL濃度となる線維芽細胞増殖因子-2FGF-2を含むチューブを用意した。そして、同様にして細胞誘引試験を行った。試験後のチューブに誘引された細胞における蛍光強度を測定することにより、実施例の誘引剤、陰性対照、及び陽性対照の細胞誘引能を比較した。詳しくは、チューブから回収された細胞にFITC標識レクチンを結合させ、測定波長485nm、対照波長510nmにおける蛍光強度を測定した。なお、各試験においてマウスの数は、4匹とし、得られた値蛍光強度の平均値を評価結果とした。一方、7週齢のC57BL/6マウスにエックス線を10Gyグレイ照射することによって、骨髄細胞を死滅させた。このマウスに対し、緑色蛍光タンパク質GFPで標識されたマウスの骨髄細胞4×106cellsを移植した。6週間後、移植を受けたマウスの骨髄に含まれるGFP陽性の細胞の割合をフローサイトメトリー日本ベクトンディッキンソン社製、機器名BDFACSCantoIIフローサイトメーターを使用により解析した結果、骨髄細胞の約98がGFP陽性であった。さらに、上記と同様にして、試験サンプル、陰性対照サンプル、陽性対照サンプルのチューブを用いて細胞誘引試験を行い、回収した細胞をフローサイトメトリーにより解析した結果、各サンプルのマトリゲルに含まれる細胞の90以上がGFP陽性であった。このことから、マトリゲル内に誘引された細胞の90以上が骨髄由来であると判断した。なお、骨髄細胞は、主に骨髄幹細胞で構成されている。細胞誘引試験の結果について、蛍光強度を示したグラフを図15及び図16に示す。詳しくは、図15は、実施例1の誘引剤メタリジウムアニソプリエMetarhiziumanisopliaeの培養抽出物、陰性対照、及び陽性対照における結果を示している。また、図16は、実施例2の誘引剤デアセチルサイトカラシンC、陰性対照、及び陽性対照における結果を示している。"