"培養液と、前記培養液に接触している第一電極と、前記培養液に接触している、ガス拡散電極である第二電極と、前記培養液中に存在し、代謝によりエネルギー貯蔵物質を生成して蓄積する微生物と、前記微生物の代謝に関与する物質と、前記培養液外での前記第一電極と前記第二の電極との間の電気抵抗値を制御する電気抵抗制御手段とを備えるエネルギー貯蔵物質製造装置。培養液と、前記培養液に接触している第一電極と、前記培養液に接触している第二電極と、前記培養液中に存在する、代謝によりエネルギー貯蔵物質を生成して蓄積する微生物と、前記微生物の代謝に関与する物質と、前記第一電極の電位を制御する電位調整手段とを備えるエネルギー貯蔵物質製造装置。前記微生物が、ラルストニアユートロファRalstoniaeutrophaである請求項1又は2に記載のエネルギー貯蔵物質製造装置。前記培養液内に存在し、前記第一電極と前記微生物との間の電子移動を媒介するメディエーターを更に備える請求項1乃至3のいずれか一項に記載のエネルギー貯蔵物質製造装置。前記第一電極上に配置されているレドックスポリマーを更に備える請求項1乃至4のいずれか一項に記載のエネルギー貯蔵物質製造装置。しかし、微生物の代謝を精密に制御し、更にその状態を維持することは、非常に困難であった。本発明は上記事由に鑑みてなされたものであり、エネルギー貯蔵物質を生成蓄積する微生物の代謝を精密に制御することで、エネルギー貯蔵物質の生産効率を向上することが可能となるエネルギー貯蔵物質製造装置を提供することを目的とする。本発明に係るエネルギー貯蔵物質製造装置は、培養液と、前記培養液に接触している第一電極と、前記培養液に接触している、ガス拡散電極である第二電極と、前記培養液中に存在し、代謝によりエネルギー貯蔵物質を生成して蓄積する微生物と、前記微生物の代謝に関与する物質と、前記培養液外での前記第一電極と前記第二の電極との間の電気抵抗値を制御する電気抵抗制御手段とを備える。本発明に係るエネルギー貯蔵物質製造装置は、培養液と、前記培養液に接触している第一電極と、前記培養液に接触している第二電極と、前記培養液中に存在する、代謝によりエネルギー貯蔵物質を生成して蓄積する微生物と、前記微生物の代謝に関与する物質と、前記第一電極の電位を制御する電位調整手段とを備えてもよい。本発明において、前記微生物が、ラルストニアユートロファRalstoniaeutrophaであることが好ましい。本発明に係るエネルギー貯蔵物質製造装置は、前記培養液内に存在し、前記第一電極と前記微生物との間の電子移動を媒介するメディエーターを更に備えることが好ましい。本発明に係るエネルギー貯蔵物質製造装置は、前記第一電極上に配置されているレドックスポリマーを更に備えることが好ましい。本発明によれば、代謝によりエネルギー貯蔵物質を生成蓄積する微生物の代謝を精密に制御することができ、このためエネルギー貯蔵物質の生産効率を向上することが可能となる。本実施形態によるエネルギー貯蔵物質製造装置1は、代謝によりエネルギー貯蔵物質を生成蓄積する微生物の代謝を精密に制御するために用いられる。図1に、本実施形態によるエネルギー貯蔵物質製造装置1の第一の態様を示す。本態様によるエネルギー貯蔵物質製造装置1は、容器6、培養液4、第一電極2、第二電極3、微生物、微生物の代謝に関与する物質、並びに電気抵抗制御手段を備える。容器6は培養液4を収容するために用いられる。培養液4を収容可能であれば、適宜の容器6が使用され得る。培養液4は容器6内に収容されている。培養液4としては微生物の培養のための培地となる水溶液が挙げられる。培養液4の組成は微生物の種類、代謝の種類等に応じて適宜設定されるが、例えば培養液4は、KH2PO4、K2HPO4、NH42SO4、MgSO47H2O、NaCl,CaCl22H2O、Na2S2O35H2O等を含有する。また、後述するように培養液4中にメディエーターとしてキノン類が添加される場合には、培養液4へのメディエーターの溶解性を向上するために、培養液4にメタノールが含まれていることが好ましい。培養液4にメタノールが含まれる場合、培養液4中のメタノールの濃度は1~10g/Lの範囲であることが好ましい。第一電極2は容器6内の培養液4に浸漬されている。第一電極2の材質としては、特に制限されないが、カーボン、白金等が挙げられる。第二電極3はガス拡散電極であり、容器6内の培養液4と、外気とに接している。この第二電極3は、特に制限されないが、例えば、疎水性カーボンから成るガス供給層と、疎水性カーボン、親水性カーボン、及び白金等の適宜の反応触媒から成る反応層とを備え、これらの要素が積層した二層構造を有している。必要により、ガス供給層内には集電体が埋め込まれる。このような構成のガス拡散電極が用いられる場合、ガス供給層が外気に接し、反応層が培養液4に接する。第一電極2と第二電極3とは、培養液4外において外部配線9を通じて接続されている。尚、必要に応じ、容器6内に隔膜が配置されることで、容器6内が第一電極2が配置されている第一電極室と、第二電極3が配置されている第二電極室とに仕切られてもよい。実施形態において制御の主たる対象となる代謝は、微生物内の酸化還元雰囲気に依存する微生物の増殖と微生物によるエネルギー貯蔵物質の生成蓄積である。微生物は培養液4中に配置されている。微生物の具体例としては、エネルギー貯蔵物質を生成蓄積可能であれば特に制限されないが、ラルストニアユートロファRalstoniaeutropha、アルカリゲネスユートロフスAlcaligeneseutrophus、カプリアビダスネカトールCupriavidusnecator、アルカリゲネスレータスAlcaligeneslatus、プロトモナスオレオヴォランスProtomonasoleovorans、プロトモナスエクストルクエンスProtomonasextorquens、大腸菌組換え体RecombinantE.coli;PHA合成遺伝子が埋め込まれているミュータント、アゾトバクタービネランジイミュータントAzotobactervinelandiimutant等が、挙げられる。微生物の代謝に直接的に関与する物質としては、電子源及び炭素源が挙げられる。これらの物質は培養液4中に存在する。電子源は微生物の代謝に関与してこの微生物の代謝系に入る電子を放出する物質である。第一電極2がアノードとして機能する場合における電子源としては、微生物の種類及び代謝の種類にもよるが、グルコース、フルクトース、乳酸などの有機物、水素、亜硫酸などが挙げられる。微生物の代謝の過程でこの電子源から微生物体内に電子が注入され、この電子の少なくとも一部が微生物体内の酸化還元反応を介して第一電極2へ移動することで、第一電極2がアノードとして機能する。炭素源としては、微生物の種類及び代謝の種類にもよるが、グルコース、フルクトース、乳酸などの有機物、および二酸化炭素などが挙げられる。尚、電子源が、同時に炭素源としても機能する物質であってもよい。微生物は、培養液4内に存在することで第一電極2と電気的に接続されている。電気的に接続されているとは、微生物の体内電子移動系と第一電極2との間の電子移動が確保されていることをいう。微生物が第一電極2と接触している場合は、それにより微生物と第一電極2との間の電子移動が確保され、このため両者は電気的に接続されている。微生物が第一電極2とは離れた位置に存在する場合でも、微生物の体内電子移動系と第一電極2との間の電子移動が培養液2中の電解質、メディエータなどにより間接的に確保されていれば、微生物と第一電極2とは電気的に接続されている。図2aは、微生物551,52,53と第一電極2とが電気的に接続されている状態の例を、概念的に示している。図2aにおいて、微生物51は第一電極2と直接接触していることで第一電極2と電気的に接続されている。微生物52はメディエータを介して第一電極2と電気的に接続されている。尚、図2a図2bにおいても同様である中、Shはシャトル分子メディエーター分子を示し、Shoxはシャトル分子の酸化体を、Shredはシャトル分子の還元体を、それぞれ示す。微生物53は、この微生物53が有する伝導性微生物ナノワイヤー501が第一電極2に接触することにより、第一電極2と電気的に接続されている。尚、伝導性微生物ナノワイヤー501とは、微生物53が備える電気伝導性の毛鞭毛などであり、これが電線のように機能して微生物53の体内電子移動系から電子を取り出し、或いは体内電子移動系へ電子を取り入れることが知られている。図2bも、微生物554,55,56と第一電極2とが電気的に接続されている状態の例を、概念的に示している。この例では、第一電極2の表面上にレドックスポリマーの層7が形成されている。微生物54はレドックスポリマーの層7と接触しており、それにより微生物54の体内電子移動系と第一電極2との間の電子移動がレドックスポリマーによって確保され、このため両者は電気的に接続されている。微生物55は第一電極2とは離れた位置に存在するが、この微生物55の体内電子移動系とレドックスポリマーの層7との間の電子移動が培養液2中のメディエータにより間接的に確保されていることで、微生物55と第一電極2とが電気的に接続されている。微生物56は、この微生物53が有する伝導性微生物ナノワイヤー501がレドックスポリマーの層7に接触することにより、第一電極2と電気的に接続されている。メディエータ及びレドックスポリマーについて、更に詳しく説明する。メディエーターは、第一電極2と微生物との間の電子移動を媒介する物質であり、特に培養液4中に分散又は溶解して存在する物質である。メディエーターとしては、特に制限されないが、フェリシアン化カリウム、p-ベンゾキノン、ビタミンK32-メチル-1,4-ナフトキノン、ジクロロフェノールインドフェノールDCIP、メチルビオロゲン、ニュートラルレッド、HNQ2-ヒドロキシ-1,4-ナフトキノン等から選択される化合物が挙げられる。メディエーターとして一種類の化合物のみが用いられてもよいし、二種類以上の化合物が併用されてもよい。エネルギー貯蔵物質製造装置1がこのようなメディエーターを備えると、第一電極2と、この第一電極2から離れた位置に存在する微生物との間の電気的相互作用が強められ、このため微生物の代謝が更に制御されやすくなる。レドックスポリマーは、酸化還元能に基づく電子伝達メディエーター機能を備えるポリマーである。レドックスポリマーとしては、オスミウム配位ポリマーが挙げられる。オスミウム配位ポリマーオスミウムポリマーとは、オスミウム錯体がポリマーに担持されたものであり、オスミウム錯体の酸化還元能に基づく電子伝達メディエーター機能を備えている。オスミウム配位ポリマーの具体例としては、PVI15-dmeOs、PVP-[OsN,N’-dialkylated-2,2’-biimidazole3]23aFeiMaoetalJAMCHEMSOC200312549514957、PVI-[Os4,4’-diamino-2,2’bipyridine2Cl]/2FeiMaoetalJAMCHEMSOC200312549514957などが挙げられる。レドックスポリマーは第一電極2の表面上に存在し、このため第一電極2はレドックスポリマーの層7で覆われている。特にレドックスポリマーとしてオスミウム配位ポリマーが適用されると、オスミウム配位ポリマーの酸化還元電位は微生物内のキノンプールの酸化還元電位に近く、このためオスミウム配位ポリマーと微生物のキノンプールとの間では電子が移動し易くなる。またオスミウム配位ポリマーにおいては、オスミウムに配位している配位子の構造が変えられると、この配位子の電子吸引性が変化し、これによりオスミウム配位ポリマーの酸化還元電位が変動する。このため配位子の構造を適宜選択することでオスミウム配位ポリマーの酸化還元電位を調節することが容易であり、これによりオスミウム配位ポリマーと微生物内のキノンプールとの間で電子が更に移動しやすくすることも容易である。このため、本実施形態のように第一電極2の表面上にオスミウム配位ポリマーの層7が存在すると、第一電極2と微生物との間の電気的相互作用が強められ、このため微生物の代謝が更に制御されやすくなる。尚、エネルギー貯蔵物質製造装置1はメディエーター及びレドックスポリマーを備えなくてもよいが、微生物の代謝が容易に制御されるためにはエネルギー貯蔵物質製造装置1がメディエーター及びレドックスポリマーのうち少なくとも一方を備えることが好ましい。エネルギー貯蔵物質製造装置1がメディエーター及びレドックスポリマーを共に備えるならば更に好ましい。電気抵抗制御手段は、培養液4外での第一電極2と第二電極3との間の電気抵抗すなわち、外部配線9の電気抵抗を制御する手段である。電気抵抗制御手段は、例えば適宜の可変抵抗器10から構成される。以上のように構成される本実施形態に係るエネルギー貯蔵物質製造装置1では、微生物の代謝が生じると、例えば培養液4内の有機物等が電子源として機能する場合に、有機物から電子が微生物体内に注入され、微生物は代謝による生成物としてPHAポリヒドロキシアルカン酸、グリコーゲン、ポリリン酸等のエネルギー貯蔵物質を生成して蓄積し、或いは微生物が代謝により増殖する。有機物から注入された電子の少なくとも一部は微生物から直接又は培養液4内の電解質、メディエーター、レドックスポリマーなどを介して第一電極2へ移動し、更に外部配線9を通じて第二電極3へ移動する。第二電極3上では1/2O22H2e-→H2Oという還元反応が起こり、第二電極3から電子が酸素へ移動する。このようなエネルギー貯蔵物質製造装置1において、電気抵抗制御手段により外部配線9での第一電極2と第二電極3との間の電気抵抗が制御されると、外部配線9を通じた第一電極2と第二電極3との間の電圧降下量が変動し、それに応じて、ガス拡散電極である第二電極3の電極電位はほぼ一定に保たれるものの、第一電極2の電極電位は変動する。それによって微生物の代謝が制御される。すなわち電気抵抗制御手段が制御されることで第一電極2の電位が変化すると、それに伴って微生物の代謝が促進され、或いは抑制される。その理由は、第一電極2の電位が変化すると、メディエーターあるいはレドックスポリマーの酸化体/還元体比、ひいては微生物体内の酸化還元雰囲気が、連動して変化するためであると推察される。このように微生物体内の酸化還元雰囲気が変化すると、この微生物体内の酸化還元雰囲気に依存する代謝が、促進され或いは抑制される。このため、電気抵抗制御手段を制御することで、例えば微生物がラルストニアユートロファである場合には、ラルストニアユートロファがPHBポリヒドロキシ酪酸を生成蓄積すると同時に、ラルストニアユートロファが増殖するような環境を実現することができる。このような環境を実現するための、電気抵抗制御手段による好ましい電気抵抗値は、系の幾何学的構造等に大きく依存し、系に応じて適宜設定される。また、ラルストニアユートロファ以外の微生物の場合も、微生物がエネルギー貯蔵物質を生成蓄積すると同時に、この微生物が増殖するような環境を実現することが可能となる。図3に、本実施形態によるエネルギー貯蔵物質製造装置1の第二の態様を示す。本態様によるエネルギー貯蔵物質製造装置1は、容器6、培養液4、第一電極2、第二電極3、微生物、微生物の代謝に関与する物質、並びに電位調節手段を備える。更に、エネルギー貯蔵物質製造装置1は、必要により、メディエータ及びレドックスポリマーのうち少なくとも一方を備える。第二の態様における、第二電極3及び電位調節手段以外の装置構成は、第一の態様と同じであるため、その説明を省略する。第二の電極は、容器6内の培養液4に浸漬されている。第二電極3の材質としては、特に制限されないが、カーボン、白金等が挙げられる。電位調節手段は、第一電極2の電位を制御する手段である。本態様では、エネルギー貯蔵物質製造装置1は電位調節手段としてポテンショスタット12と、標準電極11とを備える。標準電極11としては、特に制限されないが、銀/塩化銀電極が挙げられる。ポテンショスタット12は、第一電極2が試料電極作用電極、第二電極3が対電極、標準電極11が参照電極となるように機能する。これによりポテンショスタット12は、標準電極11に対する第一電極2の電位が設定された値となるように第一電極2の電位を制御する。尚、第一電極2の電位が制御可能であるならば、電位調節手段は本態様の構成に限定されない。例えば、第一の態様における電気抵抗制御手段は、結果的に第一電極2の電位を制御するため、第一の態様における電気抵抗制御手段を電位調節手段とみなしてもよい。このようなエネルギー貯蔵物質製造装置1では、微生物の代謝が生じると、例えば培養液4内の有機物等が電子源として機能する場合に、有機物から電子が微生物体内に注入され、微生物は代謝による生成物としてPHAポリヒドロキシアルカン酸、グリコーゲン、ポリリン酸等のエネルギー貯蔵物質を生成して蓄積し、或いは微生物が代謝により増殖する。有機物から注入された電子の少なくとも一部は微生物から直接又は培養液4内の電解質、メディエーター、レドックスポリマーなどを介して第一電極2へ移動し、更に外部配線9を通じて第二電極3へ移動する。第二電極3上では、例えば1/2O22H2e-→H2Oなどの還元反応が起こり、第二電極3から電子が酸素へ移動する。このようなエネルギー貯蔵物質製造装置1において、電位調節手段により第一電極2の電位が制御されると、それによって微生物の代謝が制御される。すなわち第一電極2の電位が制御されることでこの第一電極2の電位が変化すると、それに伴って微生物の代謝が促進され、或いは抑制される。すなわち、第一の態様の場合と同様に、本態様でも微生物の体内の酸化還元雰囲気を第一電極2の電位によって容易に制御することができ、このため微生物の体内の酸化還元雰囲気に依存する代謝を容易に制御することができる。そのため、電位調節手段を制御することで、第一の態様の場合と同様に、微生物がエネルギー貯蔵物質を生成蓄積すると同時に、この微生物が増殖するような環境を実現することが可能となる。このような微生物に蓄積されたPHAなどのエネルギー貯蔵物質は、公知の手法により抽出され得る。例えば、PHAを蓄積する微生物を高圧ホモジナイザーで処理したり溶菌酵素を添加して細胞壁を溶解したりすることで、微生物からPHA顆粒を分離回収し、このPHA顆粒を酵素等で処理するなどしてPHAを得る方法が、挙げられる。また、このようにしてPHA等のエネルギー貯蔵物質を生産するプロセスは、再生可能炭素資源バイオマスを原料とし得るプロセスである点でも有用である。また、特に微生物の代謝によりポリリン酸を生産するプロセスでは、廃水等からリンを回収することが可能となり、廃水処理としても有用である。[エネルギー貯蔵物質製造装置の構成]本実施例では、エネルギー貯蔵物質製造装置1を次のようにして構成した。容器6として、容積4mlのガラス製容器を用意した。また、水にKH2PO4を4.53g/Lの割合、K2HPO45.64g/Lの割合、NH4Clを5.0g/Lの割合、MgSO47H2Oを0.8g/Lの割合、CaCl22H2Oを0.082g/Lの割合、微量金属溶液を1mL、フルクトースを3.6g/Lの割合で溶解させることで、培養液4を調製した。微量金属溶液には水にFeCl2を1.27g/Lの割合、CoCl2を0.13g/Lの割合、MnCl2/4H2Oを0.20g/Lの割合、ZnCl2を0.14g/Lの割合、H3BO3を0.0062g/Lの割合、NiCl2を0.013g/Lの割合、AlCl3を0.013g/Lの割合、Na2MoO4/2H2Oを0.024g/Lの割合、CuCl2を0.0013g/Lの割合で溶解させたものを用いた。この培養液4を容器6内に入れた。容器6内の培養液4をN2ガスでバブリングすることで、培養液4に溶存する酸素を取り除いた。この培養液4にメディエーターとしてフェリシアン化カリウムを100mMの濃度となるように添加した。尚、この場合の炭素源および電子源は培養液中のフルクトースである。第一電極2としては1cm×1cmの寸法のカーボン板glassycarbon板を、第二電極3としては1cm×1cmの寸法の、白金担持炭素を備える酸素還元ガス拡散電極を、用意した。これらの第一電極2を培養液4中に浸漬すると共に、第二電極3を培養液4中と外気とに接触させた。微生物としては、PHAの一種であるPHBポリヒドロキシ酪酸を生成蓄積するラルストニアユートロファH16RalstoniaeutrophaH16を用意し、これを培養液4中に108cell/mLの濃度となるように加えた。電気抵抗制御手段としては、可変抵抗器10を用意した。[微生物の代謝制御]条件1上記のように構成したエネルギー貯蔵物質製造装置1をシールドボックス内に設置し、遮光下で30°Cに維持した。この状態で、可変抵抗器10により第一電極2と第二の電極3との間の電気抵抗値を例えば1Ωに調整した。条件2条件1において、第一電極2と第二の電極3との間の電気抵抗値を例えば1MΩに変更し、それ以外は条件1と同じ条件とした。評価試験1条件1及び条件2において、培養液内のポリヒドロキシ酪酸に基づく蛍光発光の強度を測定した。具体的には、培養液を100μLをとりだし、これを、0.02質量のナイルブルー硫酸水素塩水溶液100μLと混合して混合液を調製した。この混合液を3分以上10分未満静置した後に、この混合液について、励起波長490nm、蛍光波長590nmの条件で、蛍光強度を測定した。評価試験2条件1及び条件2において、培養液の散乱光による透過光に基づいて菌濃度OD600を測定した。評価試験3条件1及び条件2において、試験開始から48時間経過時において微生物に蓄積されていたポリヒドロキシ酪酸を、硫酸処理により分解することによってモノマー化し、このモノマーを、酵素により定量した。具体的には、まず、培養液を遠心分離して上澄みを捨て、続いて培地で洗浄した後、再び遠心分離し上澄みを捨て、続いて培地で適当な菌濃度に希釈することで、サンプルを調製した。このサンプル0.5mLを、バイアル瓶中で1-プロパノール0.8mL、及び濃硫酸0.2mLと混合することで混合液を調製した。バイアル瓶を密栓してから、この混合物を90°Cで約4時間加熱し、続いて混合液を常温まで冷ましてから、この混合液を別の容器に移し、8.5mLの蒸留水で希釈した。希釈後の混合液1mLに対し、10Mの水酸化カリウム溶液を80μL加え、約10分間放置した後、1Mトリス塩酸pH8.0400μLを加え、さらにpHが7~8となるように塩酸を加えた。続いて、この混合液全体が2mLになるよう蒸留水で希釈することで、酵素定量用のサンプルを得た。このサンプル中のモノマーの定量には、J.Kインターナショナル製のD-3-ヒドロキシ酪酸用酵素キットを使用した。これらの結果によれば、可変抵抗器10で第一電極と第二の電極との間の電気抵抗値を調整することで、微生物の増殖とエネルギー貯蔵物質の蓄積量とを制御することができ、微生物が代謝によって増殖すると同時にエネルギー貯蔵物質を生成蓄積し得るような育成環境を実現することができることが、確認された。[エネルギー貯蔵物質製造装置の構成]本実施例では、エネルギー貯蔵物質製造装置1を次のようにして構成した。容器6として、容積4mLのガラス製容器を用意した。また、水にKH2PO4を4.53g/Lの割合、K2HPO45.64g/Lの割合、NH4Clを5.0g/Lの割合、MgSO47H2Oを0.8g/Lの割合、CaCl22H2Oを0.082g/Lの割合、微量金属溶液を1mL、フルクトースを3.6g/Lの割合で溶解させることで、培養液4を調製した。微量金属溶液には水にFeCl2を1.27g/Lの割合、CoCl2を0.13g/Lの割合、MnCl2/4H2Oを0.20g/Lの割合、ZnCl2を0.14g/Lの割合、H3BO3を0.0062g/Lの割合、NiCl2を0.013g/Lの割合、AlCl3を0.013g/Lの割合、Na2MoO4/2H2Oを0.024g/Lの割合、CuCl2を0.0013g/Lの割合で溶解させたものを用いた。この培養液4を容器6内に入れた。容器6内の培養液4をN2ガスでバブリングすることで、培養液4に溶存する酸素を取り除いた。この培養液4にメディエーターとしてフェリシアン化カリウムを100mMの濃度となるように添加した。尚、この場合の炭素源および電子源は培養液中のフルクトースである。第一電極2としては1cm×1cmの寸法のカーボン板glassycarbon板を、第二電極3としては直径0.3μm、長さ3cmの白金線を用意した。これらの第一電極2及び第二電極3を培養液4中に浸漬した。電位調節手段としてはポテンショスタット10と銀/塩化銀電極とを用意した。微生物としては、PHAの一種であるPHBポリヒドロキシ酪酸を生成蓄積するラルストニアユートロファH16RalstoniaeutrophaH16を用意し、これを培養液4中に108cell/mLの濃度となるように加えた。電気抵抗制御手段としては、可変抵抗器10を用意した。[微生物の代謝制御]条件1上記のように構成したエネルギー貯蔵物質製造装置1をシールドボックス内に設置し、遮光下で30°Cに維持した。この状態で、電位調節手段により第一電極2の電位を-0.2Vvs.Ag/AgClに調整した。条件2条件1において、電位調節手段により第一電極2の電位を0.4Vvs.Ag/AgClに変更し、それ以外は条件1と同じ条件とした。評価試験本実施例においても、実施例1の場合と同じ評価試験1~3をおこなった。評価試験1についての結果を図4に、評価試験2についての結果を図5に、評価試験3についての結果を図6に示す。尚、図4及び図5において、横軸は、試験開始時からの経過時間を示す。これらの結果によれば、電位調節手段で第一電極の電位を調整することで、微生物の増殖とエネルギー貯蔵物質の蓄積量とを制御することができ、微生物が代謝によって増殖すると同時にエネルギー貯蔵物質を生成蓄積し得るような育成環境を実現することができることが、確認された。"