"ヒトを除く哺乳動物の組織由来の活性化リンパ球を有効成分として含む,前記動物と同種であり他家動物の免疫機能の強化剤。前記動物の組織由来の活性化リンパ球が,インターロイキン-2及び抗CD3抗体のいずれか又は両方により活性化された活性化リンパ球である,請求項1に記載の剤。前記ヒトを除く哺乳動物が,抗体や免疫細胞が母体から胎子へ胎盤を介して移行しないヒトを除く哺乳動物である,請求項1に記載の剤。前記ヒトを除く哺乳動物が,ウシ又はウマである,請求項1に記載の剤。請求項1に記載の剤であって,前記動物の新生子の虚弱症候群を治療するための剤として用いられる剤。前記虚弱症候群が感染症を含む,請求項5に記載の剤。ヒトを除く哺乳動物からリンパ球を分離する工程と,分離されたリンパ球を増殖及び活性化し活性化リンパ球を得る工程と,得られた活性化リンパ球を用いて製剤する工程とを含む,他家動物の免疫機能の強化剤の製造方法。前記活性化リンパ球を得る工程が,インターロイキン-2及び抗CD3抗体のいずれか又は両方の存在下に分離されたリンパ球を培養する工程を含む,請求項7に記載の製造方法。前記動物がウシであり,活性化リンパ球を得る工程が,抗ウシCD3抗体の存在下に分離されたリンパ球を培養する工程を含み,前記抗ウシCD3抗体が,IgG1型の抗体である,請求項7に記載の製造方法。前記他家動物の免疫機能の強化剤が,前記動物と同種であり他家新生子の虚弱症候群を治療するための,前記動物の新生虚弱子症候群の治療剤である,請求項7に記載の製造方法。ヒトを除く哺乳動物から分離され,増殖及び活性化されたリンパ球を前記動物と同種であり他家の動物に投与する工程を含む,前記動物の免疫機能強化方法。前記リンパ球を投与する工程は,前記動物の新生子に増殖及び活性化されたリンパ球を投与する工程である請求項11に記載の方法。前記リンパ球を投与する工程は,生後直後から1年以下の前記動物に増殖及び活性化されたリンパ球を投与する工程である請求項11に記載の方法。たとえば,黒毛和牛のような希少価値の高いブランド牛や,血統の良いサラブレットは,新生虚弱子症候群に罹患する確率が高い。このため,ブランド牛やサラブレットは,新生期における死亡率が高い。一方,他家動物由来の成分を投与した場合,重篤な副作用が生ずることがある。そこで,本発明は,副作用の少ない,自己以外のヒトを除く哺乳動物の免疫機能の強化剤を提供することを目的とする。この免疫機能の強化剤は,特に動物新生子の虚弱症候群を治療するための剤として有効である。また,本発明は,このような剤を製造する方法を提供することを目的とする。さらに本発明は,動物の免疫機能の強化方法を提供することを目的とする。本発明は,基本的には,自己以外の活性化リンパ球を用いても,ヒトを除く哺乳動物,とりわけ抗体や免疫細胞が母体から胎子へ胎盤を介して移行しない動物においては,意外にも重篤な副作用無しに他家動物の免疫機能を強化でき,特に動物新生子の虚弱症候群の治療に有効であるという実施例による知見に基づくものである。本発明の第1の側面は,ヒトを除く哺乳動物の組織由来の活性化リンパ球を有効成分として含む,その動物と同種であり他家動物の免疫機能の強化剤に関する。本発明の第1の側面の剤の好ましい態様は,ヒトを除く哺乳動物の組織由来の活性化リンパ球が,インターロイキン-2及び抗CD3抗体のいずれか一方又は両方により活性化された活性化リンパ球である。本発明の第1の側面の剤の好ましい態様は,哺乳動物が抗体や免疫細胞が母体から胎子へ胎盤を介して移行しない動物であり,具体的にはウシ又はウマである。本発明の第1の側面の剤の好ましい態様は,抗体や免疫細胞が母体から胎子へ胎盤を介して移行しない動物の新生子の虚弱症候群を治療するための剤として用いられるものである。そして,虚弱症候群の例は感染症である。ウシ又はウマであれば,他家由来の活性化リンパ球を投与した場合でも,重篤な副作用は認められなかった。また,先に説明した通り,虚弱体質に出生した新生期のウシ又はウマは,下痢や肺炎などの感染症に罹患しやすく,治療の効果無く死に至る確立が高い。本発明の剤を用いると,特にウシ又はウマの虚弱症候群を治療できる。その結果,例えば感染症からウシ又はウマの新生子を守ることができる。本発明の第2の側面は,他家動物の免疫機能の強化剤の製造方法に関する。この方法は,ヒトを除く哺乳動物からリンパ球を分離する工程と,分離されたリンパ球を増殖及び活性化し活性化リンパ球を得る工程と,得られた活性化リンパ球を用いて製剤する工程とを含む。本発明の第2の側面の方法の好ましい態様は,活性化リンパ球を得る工程が,インターロイキン-2及び抗CD3抗体のいずれか一方又は両方の存在下にリンパ球を培養する工程を含むものである。本発明の第2の側面の方法の好ましい態様は,他家動物の免疫機能の強化剤が,ヒトを除く哺乳動物,とりわけ抗体や免疫細胞が母体から胎子へ胎盤を介して移行しない動物と同種であり他家新生子の虚弱症候群を治療するための,動物新生虚弱子症候群の治療剤である。本発明の第3の側面は,ヒトを除く哺乳動物,とりわけ抗体や免疫細胞が母体から胎子へ胎盤を介して移行しない動物の免疫機能強化方法に関する。この方法は,動物から分離され,増殖及び活性化されたリンパ球を,動物と同種であり他家の動物に投与する工程を含む。本発明の第3の側面の好ましい態様は,ヒトを除く哺乳動物,とりわけ抗体や免疫細胞が母体から胎子へ胎盤を介して移行しない動物の新生子に増殖及び活性化されたリンパ球を投与するものである。すなわち,この態様は,新生子の免疫機能を強化し,虚弱症候群を治療するものである。本発明の第3の側面の好ましい態様は,生後直後から1年以下,さらに好ましいのは生後直後から3ヶ月以下の新生子の抗体や免疫細胞が母体から胎子へ胎盤を介して移行しない動物に増殖及び活性化されたリンパ球を投与するものである。生後数カ月以内の動物は,免疫寛容状態が強いため,他家由来の活性化リンパ球を投与しても拒絶反応がそれほど起こらない。このため,本発明の剤は,月齢数カ月の動物の免疫機能を強化するために有効に用いることができる。本発明によれば,実施例により実証された通り,抗体や免疫細胞が母体から胎子へ胎盤を介して移行しない動物において,副作用が少ない他家動物の免疫機能の強化剤を提供できる。この免疫機能の強化剤は,特に動物新生子の虚弱症候群を治療するための剤として有効である。また,本発明によればそのような剤を製造する方法を提供できる。さらに本発明によれば,抗体や免疫細胞が母体から胎子へ胎盤を介して移行しない動物の免疫機能を強化する方法を提供できる。これにより,ブランド牛やサラブレットといった高級な動物を効果的に育成できる。本発明の第1の側面は,ヒトを除く哺乳動物の組織由来の活性化リンパ球を有効成分として含む,その動物と同種であり他家動物の免疫機能の強化剤に関する。他家動物とは,同種でありいわゆるアロジェニックを意味する。動物と同種とは,例えば,リンパ球を採取した対象がウマであれば,ウマを意味する。他家動物とは,非自己を意味する。他家動物の例は,母子リンパ球を採取する対象が母畜であり,活性化リンパ球を含む剤を投与される対象が子畜である。他家動物の別の例は,父子である。もっとも,実施例において実証された通り記動物は他家由来の成分を移入しても,重篤な副作用は認められない。このため,他家動物は,血縁関係にない同種の動物であってもよい。哺乳動物には胎盤を介して十分な抗体が移行するヒトのみならず,抗体や免疫細胞が母体から胎子へ胎盤を介して移行しない動物がある。抗体や免疫細胞が母体から胎子へ胎盤を介して移行しない動物の例は,ウシ,ウマ,ヒツジ,ヤギ,ブタ及びパンダである。本発明の剤は,このような抗体や免疫細胞が母体から胎子へ胎盤を介して移行しない動物以下,対象動物ともよぶに対して有効に用いられる。対象動物は,胎子期に母畜の胎盤を介して胎子へ抗体や免疫細胞を含む免疫物質が全く移行できない。これらの中でも,本発明の剤は,ウシ又はウマに好ましく用いることができる。ウシは,新生子牛に発生する新生子虚弱症候群WCSに罹患する確率が高い。WCSは,ウシの出生時から免疫機能特に免疫細胞のうちTリンパ球の機能が低下していることに起因して発症する。よって,本発明の剤は,特にウシの新生子虚弱症候群の治療に有効である。ブランド牛の新生子は,感染症により死亡する確率が高い。後述する実施例に示されるように,本発明の剤によりウシ新生子の免疫機能を高めることができるので,本発明の剤は,ウシの新生子の感染症を防止するために有効に用いることができる。また,ウマもウシと同様に,母畜の胎盤を介して免疫物質を移行できない。このため,本発明の剤は,ウマの新生子虚弱症候群の治療に有効である。抗体や免疫細胞が母体から胎子へ胎盤を介して移行しない動物の組織由来の活性化リンパ球は,例えば,動物の末梢血からリンパ球を分離して培養したものを用いればよい。動物の組織には,例えば,骨髄幹細胞など,骨髄に存在する細胞があげられる。活性化リンパ球は,例えば,インターロイキン-2又は抗CD3抗体により活性化された活性化リンパ球が好ましい。本発明は,ウシ又はウマに活性化リンパ球を投与する場合,白血球抗原が自己のものと一致しない他家由来の活性化リンパ球を投与することができる点において有効である。通常,個体間で白血球抗原が一致する確率は低い。また,白血球抗原が一致しない他家由来の活性化リンパ球を投与した場合,重篤な副作用が生じる。そのため,活性化リンパ球を用いた感染症の治療には,自己由来の活性化リンパ球が用いられることが多い。白血球抗原が自己のものと一致したものを見つけられた場合に限り,白血球抗原が自己のものと一致した他家由来の活性化リンパ球が用いられていた。自己由来の活性化リンパ球を用いる場合,自己の末梢血からの採血をし,そこから分離したリンパ球を活性化し,増殖させるために2週間程度培養することが必要である。そのため,新生子虚弱症候群WCSに罹患する確率が高いウシやウマの新生子に,生後直後に,自己由来の活性化リンパ球を投与し,新生子の感染症を予防することは不可能であった。白血球抗原が自己のものと一致した活性化リンパ球を用いる場合,個体間で白血球抗原が一致する確率は低いため,ブランド牛やサラブレット馬を育成している畜産動物種間だけでは,白血球抗原が一致する個体を見つけることは困難であった。さらに,白血球抗原が自己のものと一致した活性化リンパ球を用いる場合,他家由来の白血球抗原が自己の白血球抗原と一致することを確認するまでの検査に,時間及び費用がかかるとうい問題もあった。本発明では,ウシ又はウマに活性化リンパ球を投与する場合,白血球抗原が一致しない他家由来の活性化リンパ球を投与することができる。そのため,他家由来の活性化リンパ球の製剤を,あらかじめ製造し,保存しておくことにより,活性化リンパ球の製剤を新生子の生後直後に投与することができる。このことにより,活性化リンパ球の製剤は,新生子の感染症を予防することができ,特に問題となっていた新生子虚弱症候群の治療に有効に作用する。さらに,本発明では,ウシ又はウマに活性化リンパ球を投与する場合,白血球抗原が一致しない他家由来の活性化リンパ球を投与できるため,白血球抗原の検査の工程を省くことができる。また,白血球抗原の一致が必要ないため,ある1個体の活性化リンパ球を量産することにより,活性化リンパ球製剤の大量生産が可能となり,製造コストを抑えることができる。次に,本発明の第2の側面に関する,他家動物の免疫機能の強化剤の製造方法について説明する。この方法は,抗体や免疫細胞が母体から胎子へ胎盤を介して移行しない動物からリンパ球を分離する工程と,分離されたリンパ球を増殖及び活性化し活性化リンパ球を得る工程と,得られた活性化リンパ球を用いて製剤する工程とを含む。この活性化リンパ球の製造方法は,例えば,特開2004-2312号公報に開示された方法に適宜修正を加えた方法を採用すればよい。この方法の好ましい態様は,インターロイキン-2又はT細胞増殖を促進する因子たとえば,抗CD3抗体の存在下に分離されたリンパ球を培養する工程を含むものである。後述する実施例により実証された通り,抗CD3抗体として,IgG1型のものを用いると,活性化リンパ球を効果的に活性化できる。ウシ又はウマに投与する活性化リンパ球を得る工程では,リンパ球の培養培地に,ゼラチンを加えることもできる。ゼラチンはリンパ球の活性化を促進する。また,ゼラチンを培地に添加した場合,ゼラチンは活性化されたリンパ球を保護する働きをする。さらに,後述するように,ウシ又はウマに投与する活性化リンパ球を含む製剤は冷凍保存することができるため,ゼラチンは冷凍保存の際には緩衝材として機能することができる。ゼラチンとしては,豚皮ゼラチン,牛骨ゼラチン,魚類の骨又は魚類の皮革のゼラチンを用いることができる。ゼラチンは,培養培地100重量部に対して,0.1重量部から10重量部,好ましくは1重量部から5重量部添加することができる。ゼラチンは通常の方法で培地に混合される。リンパ球を,ゼラチンを含有した培地で培養する場合,培養温度は,37°Cから42°Cであれば良く,好ましくは,39°Cから42°Cの比較的高温域で培養することが好ましい。39°Cから42°C以下の温度は通常の培養温度よりも高い。しかし,39°C以上42°C以下の温度はゼラチンを均一に溶解できる温度であり,かつ,ウシ又はウマの平均体温に近い温度である。そのため,ウシ又はウマに投与するリンパ球を39°C以上42°C以下の温度で培養することにより,ウシ又はウマに対してより活性の高いリンパ球を得ることができる。本発明の強化剤は,製造後冷凍保存してもよい。そして,例えば,新生子が生まれる際に解凍し,投与してもよい。また,本発明の剤は,液剤として調整し,ブランド牛や競走馬サラブレッドの雄の精子とともに冷凍したキットとして提供されてもよい。このように,雄の精子と活性リンパ球製剤がキットとなることで,比較的副作用の起きにくい活性化リンパ球製剤を販売できる。すなわち,このようなキットに含まれる精子を用いて受精し,生まれた新生子にとってその父親由来の活性リンパ球を含む剤が存在するので,比較的副作用が少ない状態で本発明の剤を投与することができる。ブランド牛やサラブレッドのうち種牛や種馬は限られているため,本発明のキットを有効に用いることができる。活性化リンパ球を主成分とする製剤の投与量は,例えば,対象となる抗体や免疫細胞が母体から胎子へ胎盤を介して移行しない動物の種類により適宜増減して使用してもよい。1回あたりの製剤の投与量の例は,体重1kgあたりのリンパ球投与量が,1×102個以上1×109個以下である。1回あたりの製剤の投与量は,リンパ球投与量が,1×103個以上1×1011個以下でもよく,1×104個以上1×1010個以下でもよい。本発明の剤は,公知の剤型を採用できる。本発明の剤の好ましい剤系は,注射剤である。この剤の例は,0.01~5体積の血清又は血清アルブミンを含む生理食塩液に適量の活性リンパ球を分散した注射剤である。注射剤の投与方法の例は,静脈への注射である。投与頻度の例は1回/日以上1回/月以下である。本発明の第3の側面は,抗体や免疫細胞が母体から胎子へ胎盤を介して移行しない動物の免疫機能強化方法に関する。この方法は,動物から分離され,増殖及び活性化されたリンパ球を,動物と同種であり他家の動物に投与する工程を含む。本発明の第3の側面の好ましい態様は,抗体や免疫細胞が母体から胎子へ胎盤を介して移行しない動物の新生子に増殖及び活性化されたリンパ球を投与するものである。すなわち,この態様は,新生子の免疫機能を強化し,虚弱症候群を治療するものである。本発明の第3の側面の好ましい態様は,抗体や免疫細胞が母体から胎子へ胎盤を介して移行しない動物において,生後直後から1年以下,さらに好ましいのは生後直後から3ヶ月以下の動物の新生子に増殖及び活性化されたリンパ球を投与するものである。生後数カ月以内の動物は,免疫寛容状態が強いため,他家由来の活性化リンパ球を投与しても拒絶反応がそれほど起こらない。このため,本発明の剤は,月齢数カ月の動物の免疫機能を強化するために有効に用いることができる。活性化リンパ球の調整この実施例では,ウシ末梢血からリンパ球を採取し,採取したリンパ球をIL-2及び抗ウシCD3抗体を用いて活性化することで,活性化リンパ球を得た。以下,各工程について説明する。活性化リンパ球培養用フラスコの調製抗ウシCD3抗体MM1AIgG1,VNRD社製を滅菌したリン酸緩衝食塩液PBSで2.5μl/mlの濃度に希釈し,表面積75cm2のフラスコ住友ベークライト社製に10ml注入した。この抗体希釈液をフラスコの底面にまんべんなく広げ,冷蔵庫4°Cで使用時まで静置し,固相化した。使用時に冷蔵庫から取り出し,抗体希釈液を吸引除去後,滅菌PBSで3回洗浄し,最後に洗浄した残りの液を十分に吸引除去し,活性化リンパ球培養用フラスコを調製した。培養用培地の調製インターロイキンIL-2を700Uml含有するLAM-1培地株式会社ケーナインラボ製に体積比2.5仔牛血清JRHバイオサイエンス社製,放射線滅菌済みを含むよう添加して,調製した。培養工程の途中で使用するIL-2を175Uml含むLAM-2培地株式会社ケーナインラボ製及びIL-2を175U/mlを含むLAM-3培地ガス透過性バッグ入り,全量750ml,株式会社ケーナインラボ製は,既成ものを使用した。末梢血からのリンパ球の分離ヘパリン処理した採血管を用いて,ウシの頸静脈から末梢血全血20mlを採血した。末梢血を1600回転で10分間遠心分離し,分離された血漿を新しい滅菌チューブに分取した。血球成分が含まれる遠心分離の沈さに,総量が全血量の2倍である40mlになるようにRPMI-1640培地和光純薬社製を加えて希釈し,Ficoll-PaqueGE社製3mlに対し希釈血液10mlを重層して,1,600回転,30分,22°Cの条件で遠心を行い,リンパ球を含む末梢血単核球PBMC層を回収し,RPMI-1640培地で1回洗浄した。この操作で,約1×107個の末梢血単核球PBMCが得られた。リンパ球の培養回収したPBMCを,IL-2を700Uml及び体積比2.5の仔牛血清を含むLAM-1培地20ml中に懸濁させ,抗ウシCD3抗体を固相化したフラスコ中に入れて,培養を開始した。培養3日後にLAM-2培地を20ml添加し,さらにその2日後培養5日後にLAM-2培地を40ml添加した。その2日後培養7日後に細胞が十分に増殖したことを確認し,LAM-3培地に細胞浮遊液の全量を移した。以降,増殖した細胞を回収するまでの5~10日間,炭酸ガスインキュベーター内に静置した。培養温度は,37°Cから42°Cであれば良く,好ましくは,39°Cから42°Cの比較的高温域で培養することができる。培養リンパ球製剤の調製投与予定が確定した培養リンパ球は,培養リンパ球が浮遊した培養液が入ったバッグ培養容器LAM-3をよく攪拌し,サンプルポートから細胞浮遊液を遠心管に回収して,1600回転,7分間の条件で遠心し,培養リンパ球を回収した。その後,0.1自己血清全血から遠心分離した血漿を1日以上冷蔵保存した後,56°Cで30分間インキュベーションし非働化した。さらに1日以上冷蔵保存した後,3,000回転,20分間の条件で遠心し,その上清を自己血清とした。を含む生理食塩液で2回洗浄し,最後に1自己血清を含む生理食塩液50mlに浮遊させ,注射筒に充填し,投与製剤とした。なお,培養リンパ球浮遊培養液中のエンドトキシン測定トキシカラーテスト,生化学工業社製とトリプトソーヤ寒天培地ニッスイ社製による細菌培養を実施し,投与前に安全性を確認した。培養リンパ球の表面型の測定上記により得られた培養リンパ球5×105個を試験管に分取し,PBSを加えて1回洗浄後上清を除去して,直接染色の場合FITCフルオレセインイソチオシアネートまたはPEフィコエリスリン標識モノクローナル抗体10μlを,間接染色の場合非標識モノクローナル抗体1μgをそれぞれ加えよく撹拌した。冷蔵庫内で30分間静置の後,PBSで1回洗浄した。間接染色の場合,次に適当に希釈したFITC標識ヒツジ抗マウス抗体セロテック社製50μlを加えよく撹拌し,冷蔵庫内に30分間静置した。その後,PBSで1回洗浄し,最後にシース液0.5mlを加え,よく撹拌し,CyAnDako社製で各抗体に反応した表面抗原を測定した。測定に用いたモノクローナル抗体は,直接染色にはFITC標識抗ウシCD8抗体9ACT80C:VNRD社製,PE標識抗ウシCD4抗体CACT183B:VNRD社製,PE標識抗イヌCD21抗体MCA1781PE,セロテック社製,間接染色には抗ウシCD3抗体MM1A,VNRD社製,抗ウシγδT細胞抗体WC-1,セロテック社製,抗B-B7CD21like抗体GB25A,VMRD,を用いた。対照として非特異的反応を測定するため,FITC標識抗マウスIgG1抗体Dako社製及びPE標識抗マウスIgG1抗体Dako社製を用いた。その結果を,表1に示す。この実施例では,母ウシ由来の活性化リンパ球を得て,新生子牛に活性リンパ球を含む剤を投与した。以下,この実施例の各工程について説明する。活性化リンパ球の調製ホルスタイン種,黒毛和種及び雑種の母牛から,分娩予定日の2~3週間前に末梢血全血を採血した。そして,実施例1に従って活性リンパ球を分娩当日まで継続して培養した。図1は,活性リンパ球の増殖曲線を示すグラフである。培養リンパ球の仔牛への投与培養リンパ球を,新生子牛の出生日0日齢から2日以内に回収し,新生子牛の頸静脈から移入した。活性化リンパ球の投与量は,約1×109個であった。これらの新生仔牛を活性化リンパ球投与群とした。一方,新生仔牛のうち活性化リンパ球を投与しなかった群を対照群とした。そして,全ての新生子牛に対し,母牛からの初乳摂取による影響を排除するため,出生後に市販の粉末初乳製剤を給与した。その後,2週齢後に1回目ワクチン接種,6週齢後に2回目ワクチン接種をそれぞれ実施し,0,3,7日齢,2週齢とその3日後,6週齢とその3日後及び6日後の計8回について末梢血の採血を行い,末梢血中白血球の分画の解析及びリンパ球表面型の測定,PHAフィトヘムアグルチニン刺激によるサイトカイン遺伝子発現量の解析を行った。末梢血中リンパ球表面型の測定実施例1と同様にして,末梢血中リンパ球の表面型を測定した。図2は,末梢血単核球PBMCの変化を示すグラフである。図3は,CD3陽性Tリンパ球の変化を示すグラフである。図4は,Bリンパ球の変化を示すグラフである。図5は,IgM型Bリンパ球の変化を示すグラフである。図6は,ナチュラルキラー細胞NK細胞の変化を示すグラフである。図2,図3及び図6から,活性化リンパ球投与群及び対照群とも,末梢血単核球PBMC数,CD3陽性Tリンパ球数,CD8キラーT細胞数及びNK細胞数は,出生後緩やかに増加することが分かる。ただし,これらの細胞増殖は2回目のワクチン接種後において活性化リンパ球投与群の方が対照群に比べ高いことが分かる。一方,図4及び図5から,対照群に比べて活性化リンパ球投与群は,2回目ワクチン接種3日後及び6日後においてBリンパ球MHCclass-IICD14-B細胞とIgM型Bリンパ球CD21IgMB細胞が有意に増加したことが分かる。図7AはCD4細胞の変化を示すグラフである。図7Bは,CD4CD45R-細胞の変化を示すグラフである。図8Aは,CD8細胞の変化を示すグラフである。図8Bは,CD8CD45R-細胞の変化を示すグラフである。図7A,図7B,図8A,図8Bから,これらの細胞増殖は,活性化リンパ球投与群の方が対照群に比べて高いことが分かる。このことは,本実施例における活性化リンパ球が,新生仔牛の免疫機能を強化させたことを示す。また,これらの細胞は,1回目のワクチン接種後から緩やかに増加し,2回目のワクチン接種後により増加する。このことは,1回目のワクチン接種により,細胞の抗原応答性が高くなり,2回目のワクチン接種時にはより,抗原に対する応答性が高くなっていることを示す。サイトカイン遺伝子発現量の解析ヘパリン添加血液から比重液を用いて末梢血単核球PBMCを分離し,mRNAを抽出した。従来の方法を参考に,抽出したmRNAを用いてcDNAを合成し,real-timePCRを実施した。内部標準遺伝子としてβ-アクチンactinを用いて実施した。SYBRGreenPCRMasterMixAppliedBiosystemsCAUSAを利用して報告されている方法に準じて7700SequenceDetectorを用いてreal-timePCRを実施した。PCRの条件は,StepOnePlusTMReal-TimePCRSystemの取扱説明書に従った。この装置にサンプルをセットし,50°C30分間,95°C15分間をそれぞれ1回行い,95°C15分間,60°C1分間を1サイクルとした反応を45回繰り返した。対象遺伝子と,PCR用のフォワードプライマー及びリバースプライマーは,以下の表2に示す通りであった。サイトカイン遺伝子発現量は増幅した各遺伝子のThresholdCycleCt値を用いて,サイトカイン遺伝子発現量=2の計算式にて求めた。その結果を図9に示す。図9A,B,C及びDは,それぞれIL-2遺伝子,IL-4遺伝子,IL-6遺伝子及びIFN-γ遺伝子の発現量を示すグラフである。図9A,B,C及びDから,いずれのサイトカイン遺伝子も2回目ワクチン接種前及び3日後は,活性化リンパ球を投与した群の方が対象群に比べてサイトカイン発現量が多いものの,6日目には活性化リンパ球を投与した群の方が対象群に比べてサイトカイン発現量が少なくなることが分かる。このことは,本実施例における活性化リンパ球が,新生仔牛の免疫機能を早期に強化したことを示す。上記実施例では,自己以外の他家動物として新生子とその実母の例が用いられていたが,実母以外の雌牛への受精卵移植による出生の一例が含まれており,母子関係にない場合の他家においても,本発明は有効である。この実施例では,母ウマ由来の活性化リンパ球を得て,新生子馬に活性リンパ球を含む剤を投与した。母ウマ由来の末梢血を使用してリンパ球を採取し,採取したリンパ球をIL-2及び抗ウマ抗体を用いて活性化する以外は,実施例2と同様にして活性化リンパ球を調整した。これらの活性化リンパ球を含む剤を,実施例2と同様に新生子馬に投与した。これらの新生子馬を活性化リンパ球投与群とした。一方,新生子馬のうち活性化リンパ球を投与しなかった群を対照群とした。そして,全ての新生子牛に対し,母馬からの初乳摂取による影響を排除するため,出生後に市販の粉末初乳製剤を給与した。その後,2週齢後に1回目ワクチン接種,6週齢後に2回目ワクチン接種をそれぞれ実施し,0,3,7日齢,2週齢とその3日後,6週齢とその3日後及び6日後の計8回について末梢血の採血を行い,末梢血中白血球の分画の解析及びリンパ球表面型の測定,PHAフィトヘムアグルチニン刺激によるサイトカイン遺伝子発現量の解析を行った。その結果,ワクチン接種後3日から7日後において,活性化リンパ球投与群は対照群に比べて,末梢血中のT細胞やNK細胞数が増加したことがわかった。さらに,活性化リンパ球投与群は対照群に比べて,サイトカイン遺伝子の発現量が増加することがわかった。このことから,母ウマ由来の活性化リンパ球を新生子ウマに投与することにより,ウシの場合と同様に新生子ウマの免疫機能を早期に強化することがわかった。"