カオトロピックイオン存在溶液中でシリカコートビーズに、DNAを介して又は異なるDNAで挟んで珪藻類被殻をトラップして、珪藻類被殻の有無を直接又は珪藻類被殻をトラップしたDNAから間接的に検出することを特徴とする珪藻類の検出方法。カオトロピックイオン存在溶液中にシリカコートビーズと長鎖DNAと珪藻類被殻を容れてこれ等を結合させた後にBF分離洗浄して未反応長鎖DNAや夾雑物を洗い流し、次いで加水してシリカコートビーズ表面から長鎖DNAと珪藻類被殻を解離させて珪藻類被殻のみを取り出し検鏡することを特徴とする請求項1に記載の珪藻類の検出方法。カオトロピックイオン存在溶液中にシリカコートビーズと長鎖DNAと珪藻類被殻を容れてこれ等を結合させた後に第一回目のBF分離洗浄して未反応長鎖DNAや夾雑物を洗い流し、次いでビオチン蛍光標識の短鎖DNAを添加してこれを珪藻類被殻に不可逆的に結合させて染色して後、第二回目のBF分離洗浄し、次いで加水してシリカコートビーズ表面から珪藻類被殻をビオチン蛍光標識の短鎖DNAに結合した状態で長鎖DNAとは個別に解離させて、ビオチン蛍光標識の短鎖DNAに結合している珪藻類被殻を検鏡することを特徴とする請求項1に記載の珪藻類の検出方法。カオトロピックイオン存在溶液中にシリカコートビーズと長鎖DNAと珪藻類被殻を容れてこれ等を結合させた後に第一回目のBF分離洗浄して未反応長鎖DNAや夾雑物を洗い流し、次いで未標識の短鎖DNAを添加してこれを珪藻類被殻に結合させて第二回目のBF分離洗浄した後、珪藻類被殻に結合した未標識短鎖DNAを染色すると共に加水してシリカコートビーズから長鎖DNA、珪藻類被殻結合の未標識短鎖DNAを解離してこれ等を取り出して検鏡観察することを特徴とする請求項1に記載の珪藻類の検出方法。カオトロピックイオン存在溶液中に短鎖DNAをコーティングしたシリカコートビーズと珪藻類被殻を容れてこれ等を結合させた後にBF分離洗浄し、次いで長鎖DNAを添加しこれを短鎖DNAに結合した珪藻類被殻に結合させ、次いで加水して被殻に結合した長鎖DNAのみを解離して取り出しそれをPCR増幅して検量線を得て珪藻類を定量的に検出することを特徴とする請求項1に記載の珪藻類の検出方法。カオトロピックイオン存在溶液中に短鎖DNAをコーティングしたシリカコートビーズに珪藻類被殻を容れてこれ等を結合させた後に第一回目のBF分離洗浄し、次いで前記短鎖DNAとは配列の異なる短鎖DNAを添加しこれを珪藻類被殻に不可逆的に結合させた後に第二回目のBF分離洗浄し、シリカコートビーズと共にこれに付着している珪藻類被殻を結合の短鎖DNAを取り出してPCR増幅して検量線を得て珪藻類を定量的に検出することを特徴とする請求項1に記載の珪藻類の検出方法。カオトロピックイオン存在溶液中に短鎖DNAをコーティングしたシリカコートビーズに珪藻類被殻を容れてこれ等を結合させた後に第一回目のBF分離洗浄し、次いでビオチン蛍光標識した短鎖DNAを添加してこれを珪藻類被殻に不可逆的に結合させて後、第二回目のBF分離洗浄し、次いで基質を添加して染色しシリカコートビーズに付着した珪藻類被殻に結合のビオチン蛍光標識の短鎖DNAを取り出し、蛍光強度を測定して珪藻類を定量的に検出することを特徴とする請求項1に記載の珪藻類の検出方法。本発明は、第一に、珪藻類被殻の観察のために従来行われてきたクリーニング操作の後、残存する土砂や無機物などの夾雑物を取り除き、被殻を特異的、選択的に精製し、観察する方法を提供するものである。通常、被殻を観察するためには、クリーニング後数度の水による洗浄過程を経てプレパラートを作製する。その際の洗浄操作は、比重の重い被殻を遠心分離によって試験管の管底に集め、上清を捨て、再度被殻を浮遊させると同時にクリーニング液を希釈し、再び遠心分離して集めるという過程の繰り返しである。しかし、この操作では、被殻と同程度、或いは、より比重の重い夾雑物を取り除くことはできない。この欠点を補うため、本発明では、ケイ酸質である被殻が持つ、カオトロピックイオンの存在下でDNAを特異的に吸着する特徴を利用し、被殻のみを特異的、選択的に精製する方法を提供する。この操作は、同じ性質を持つシリカをコートした磁性ビーズとともに行い、被殻のクリーニング、洗浄操作後に行われる。具体的には、クリーニングした被殻を濃度既知のカオトロピックイオンを含む溶液中に容れ、そこにDNAとシリカビーズを加え、シリカビーズを固相として加えたDNAを介して被殻を固相に結合させる。カオトロピックイオンの存在下で珪藻類被殻やシリカコートビーズに吸着させるDNAの種類は問われない。たとえば、ヒトゲノムDNAでも構わないし、λファージDNAや各種電気泳動用のDNAマーカーなどの市販されているものを使用可能である。また、固相として使われるシリカビーズは磁性ビーズに限るものではない。カオトロピックイオンの存在下でDNAを吸着解離する特性を持つものであればよい。一般的には、粒径0.1~10μm程度の市販のビーズを使用することが可能であるし、2~4ミリ程度のピンセットで操作可能なものでもよい。一方で、この操作を水中に浮遊する珪藻類を集めるために実施することもできる。被殻は珪藻類の外殻にあたるので、水中に浮遊した状態の珪藻類の被殻を、DNAを使って磁性ビーズにトラップすれば、浮遊する珪藻類を、夾雑物を除いた状態で濃縮して集めることができる。集めた珪藻類は、クリーニング後常法により顕微鏡下で観察することが可能である。また、光学顕微鏡による被殻の観察は、クリーニング及び洗浄した被殻をプレパラート上に展開し、乾燥固定した後、適当な封入剤で封入し観察するが、被殻は、プレパラートやカバーグラスと同じガラス質であるため、屈折率の小さな封入剤の元では観察できない。一般的にはStyrax、Hyrax、Pleuraxなどの高屈折率の封入剤が使われるが、これらの高屈折率の封入剤を使っても顕微鏡下で被殻を発見、観察することは容易ではない。特に、法医学的な溺死証明の場合など、そもそも含有する珪藻類の数が少なければ、被殻の発見自体が困難である。この問題を解決するためには、一般の顕微鏡観察で多用される染色法を導入できればよい。例えば、被殻が、一般的な組織染色のように赤や青、或いは、蛍光色素で染色されれば、たとえ数が少なくても顕微鏡下での発見、観察が行いやすくなるものと考える。そこで、第二に、シリカをコートした磁性ビーズに被殻のみを特異的に結合させ、次いで、ビオチン、蛍光標識したDNAをビーズにトラップされた被殻に再度結合し、被殻に結合したビオチン、蛍光標識したDNAを既存の染色法を使って染色することによって、間接的に被殻を染色した状態で観察する方法を提供する。カオトロピックイオンの存在下で被殻及びシリカコトートビーズに結合したDNAは、1Kbp以上であれば、水などの低極性の溶液に置換すればその結合は容易に解離する。しかし、100bp以下の短鎖DNAの結合の場合、その解離特性は著しく低い。これらのDNA結合特性を組み合わせれば、DNAをシリカビーズにトラップしたり、溶出することが可能である。100bp以下の短鎖DNAの種類は問われない。たとえば、メンブレンのブロッキング剤として使われるサケ精子DNAや各種電気泳動用のDNAマーカーなど市販されているものを使用可能であるし、あらかじめビオチンやFITCなどの蛍光色素を標識したマーカーなども市販されている。さらに、ビオチンやFITCなどの蛍光色素を標識したオリゴヌクレオチドを合成して使用することもできる。第三に、珪藻類被殻を定量的に検出する方法を提供する。これは、被殻にDNAを特異的に結合させた後、シリカをコートした磁性ビーズでDNAが結合した状態の被殻のみをとりだし、被殻に結合したDNAを定量的に測定することによって行われる。結合したDNAの定量法には、酵素標識抗体法やPCR法、リアルタイムPCR法などが含まれる。被殻に結合するDNA量が一定であれば、被殻の量と結合したDNA量は比例関係になることを利用した測定法である。従来行われてきた、二酸化ケイ素から遊離したケイ素量を測定する定量法に比べ、結合したDNAをPCR法により数百万倍に増幅して測定出来るため、著しく高感度化が図れ、理論的には一分子の被殻でも測定可能である。本発明の特徴とする基本技術条件は、カオトロピックイオン存在溶液中でシリカコートビーズに、DNAを介して又は異なるDNAで挟んで珪藻類被殻をトラップして、珪藻類被殻の有無を直接又は珪藻類被殻をトラップしたDNAから間接的に検出することを特徴とする珪藻類の検出方法である。この基本技術条件の具体例は、次の方法~の通りである。、図1に記載のように、カオトロピックイオン存在溶液中にシリカコートビーズと長鎖DNAと珪藻類被殻を容れてこれ等を結合させた後にBF分離洗浄して未反応長鎖DNAや夾雑物を洗い流し、次いで加水してシリカコートビーズ表面から長鎖DNAと珪藻類被殻を解離させて珪藻類被殻のみを取り出し検鏡することを特徴とする珪藻類の検出方法。ここで、シリカコートビーズの核を磁性金属製球にすることにより前記BF分離洗浄後の排液の際に図1のに示すように、磁石で長鎖DNAと珪藻類被殻を付着させたのみを容器内に保持して未反応長鎖DNAや夾雑物を含む排液を略ほぼ全量を効率よく迅速に容器外に排出することができる。また加水解離後には、図1のに示すようにシリカコートビーズのみを容器内に保持して解離した珪藻類被殻のみを略ほぼ全量を効率よく水と共に容器外に取り出して検鏡することができる。、図2に記載のように、カオトロピックイオン存在溶液中にシリカコートビーズと長鎖DNAと珪藻類被殻を容れてこれ等を結合させた後に第一回目のBF分離洗浄して未反応長鎖DNAや夾雑物を洗い流し、次いでビオチン蛍光標識の短鎖DNAを添加してこれを珪藻類被殻に不可逆的に結合させて染色して後、第二回目のBF分離洗浄し、次いで加水してシリカコートビーズ表面から珪藻類被殻をビオチン蛍光標識の短鎖DNAに結合した状態で長鎖DNAとは個別に解離させて、ビオチン蛍光標識の短鎖DNAに結合している珪藻類被殻を検鏡することを特徴とする珪藻類の検出方法。ここで、シリカコートビーズの核を磁性金属製球にすることにより前記第一回目及び第二回目のBF分離洗浄後の排液の際に、磁石で長鎖DNAと珪藻類被殻、又は長鎖DNAと珪藻類被殻と短鎖DNAを付着させシリカコートビーズのみを容器内に保持して排液を略ほぼ全量を効率よく迅速に容器外に排出することができる。また図2のとに示すように加水解離後に、シリカコートビーズのみを容器内に保持してビーズから解離した長鎖DNAと珪藻類被殻と短鎖DNAの連結体を略ほぼ全量を効率よく水と共に容器外に取り出して検鏡観察することができる。、図3に記載のように、カオトロピックイオン存在溶液中にシリカコートビーズと長鎖DNAと珪藻類被殻を容れてこれ等を結合させた後に第一回目のBF分離洗浄して未反応長鎖DNAや夾雑物を洗い流し、次いで未標識の短鎖DNAを添加してこれを珪藻類被殻に結合させて第二回目のBF分離洗浄した後、珪藻類被殻に結合した未標識短鎖DNAを染色すると共に加水してシリカコートビーズから長鎖DNA、珪藻類被殻結合の未標識短鎖DNAを解離してこれ等を取り出して検鏡観察することを特徴とする珪藻類の検出方法。ここで、シリカコートビーズの核を磁性金属製球にすることにより前記第一回目及び第二回目のBF分離洗浄後の排液の際に、磁石で長鎖DNAと珪藻類被殻、又は長鎖DNAと珪藻類被殻と未標識短鎖DNAを付着させたシリカコートビーズのみを容器内に保持して排液を略ほぼ全量を効率よく迅速に容器外に排出することができる。また図3のとに示すように加水解離後に、シリカコートビーズのみを容器内に保持してビーズから解離した長鎖DNA、珪藻類被殻と染色した未標識短鎖DNAとの連結体を略ほぼ全量を効率よく水と共に容器外に取り出して検鏡観察することができる。、図4に記載のように、カオトロピックイオン存在溶液中に短鎖DNAをコーティングしたシリカコートビーズと珪藻類被殻を容れてこれ等を結合させた後にBF分離洗浄し、次いで長鎖DNAを添加しこれを短鎖DNAに結合した珪藻類被殻に結合させ、次いで加水して被殻に結合した長鎖DNAのみを解離して取り出しそれをPCR増幅して検量線を得て珪藻類を定量的に検出することを特徴とする珪藻類の検出方法。ここで、シリカコートビーズの核を磁性金属製球にすることにより前記BF分離洗浄後の排液の際に、磁石で短鎖DNAに結合した珪藻類被殻が付着しているシリカコートビーズのみを容器内に保持して排液を略ほぼ全量を効率よく迅速に容器外に排出することができる。また図4のとに示すように加水解離後に、シリカコートビーズを短鎖DNAに結合した珪藻類被殻と共に容器内に保持して、ビーズから解離した長鎖DNAを略ほぼ全量を効率よく水と共に容器外に取り出してPCR増幅して検量線を得て珪藻類を定量的に精度よく検出することができる。、図5に記載のように、カオトロピックイオン存在溶液中に短鎖DNAをコーティングしたシリカコートビーズに珪藻類被殻を容れてこれ等を結合させた後に第一回目のBF分離洗浄し、次いで前記短鎖DNAとは配列の異なる短鎖DNAを添加しこれを珪藻類被殻に不可逆的に結合させた後に第二回目のBF分離洗浄し、シリカコートビーズと共にこれに付着している珪藻類被殻を結合の短鎖DNAを取り出してPCR増幅して検量線を得て珪藻類を定量的に検出することを特徴とする珪藻類の検出方法。ここで、シリカコートビーズの核を磁性金属製球にすることにより前記第一回目及び第二回目のBF分離洗浄後の排液の際に、磁石で短鎖DNAに結合した珪藻類被殻が付着しているシリカコートビーズ又は、コーティイング短鎖DNAと珪藻類被殻と添加短鎖DNAが付着しているシリカコートビーズのみを容器内に保持して排液を略ほぼ全量を効率よく迅速に容器外に排出することができる。、図6に記載のように、カオトロピックイオン存在溶液中に短鎖DNAをコーティングしたシリカコートビーズに珪藻類被殻を容れてこれ等を結合させた後に第一回目のBF分離洗浄し、次いでビオチン蛍光標識した短鎖DNAを添加してこれを珪藻類被殻に不可逆的に結合させて後、第二回目のBF分離洗浄し、次いで基質を添加して染色しシリカコートビーズに付着した珪藻類被殻に結合のビオチン蛍光標識の短鎖DNAを取り出し、蛍光強度を測定して珪藻類を定量的に検出することを特徴とする珪藻類の検出方法。ここで、シリカコートビーズの核を磁性金属製球にすることにより前記第一回目及び第二回目のBF分離洗浄後の排液の際に、短鎖DNAに結合した珪藻類被殻が付着しているシリカコートビーズ又は、コーティイング短鎖DNAとビオチン蛍光標識の短鎖DNAと珪藻類被殻とが付着しているシリカコートビーズのみを磁石で容器内に保持して排液を略ほぼ全量を効率よく迅速に容器外に排出することができる。但し、本発明において、PCR増幅とは、好熱菌の耐熱性DNAポリメラーゼを利用したポリメラーゼ連鎖反応polymerasechainreactionによるDNAの増幅技術を言う。:DNA鎖長の違いによる変性とアニーリングの違いを利用して、温度の上下を繰り返すだけでDNA合成を繰り返し、DNAを増幅する又、本発明において、BF分離洗浄とは、BoundFree分離洗浄のことで、DNAの結合反応後、先ず、結合に使ったカオトロピック溶液例えば4モル、塩酸グアニヂンを捨て、その後、同濃度のカオトロピック溶液を10倍量加えて未反応のDNAと夾雑物を捨てる、さらに、70エタノールで2度洗浄し、その後は、70エタノールを完全に捨て、被殻の結合したビーズのみを残すことを言う。又、本発明の前記、、において、BF分離洗浄の後で加水する場合は、当該加水により、シリカビーズ及び被殻に結合したDNAを遊離解離するために行い、前記、、において、加水しない場合は、B/F分離洗浄の操作後に、ビーズのみが残るため、PCRを行うときはPCR反応液、ビオチン、蛍光測定の場合は、それらの測定に適したバッファーを添加する。又、本発明において染色とは、一般的な組織染色で使われるフォイルゲン反応、ヌクレアーファーストレッドなどの核酸染色法、MupidBlueなどの一般的なDNAの染色剤による染色法、各種蛍光染色剤による染色法、タンパク質やDNAの高感度染色法として知られる銀染色法などその他公知の染色法を言う。本発明の珪藻類の検出方法は、シリカ質にDNAが容易に結合することに着目し、これを珪藻類被殻との接合剤にして、珪藻類被殻をDNAに容易にトラップして珪藻類被殻の有無を直接又はトラップしたDNAから間接的に検出する手法で、簡易で安全で迅速確実で安価な検出方法である。表1には本発明方法を纏めてあるが、本発明方法は、カオトロピックイオン存在溶液中に珪藻類被殻と共に、Aシリカコートビーズと長鎖DNAを添加して結合させて後B/F分離洗浄する。又はB短鎖DNAをコーティングしたシリカコートビーズを添加して結合させて後B/F分離洗浄する。次いでAの場合はそのまま加水解離し、或いはビオチン蛍光標識DNAを添加して加水解離する。Bの場合は、長鎖DNA、又はコーティング短鎖DNAとは配列の異なる短鎖DNA又はビオチン蛍光標識DNAを又は無標識DNAを添加して当該DNAを珪藻類被殻に不可逆的に結合してB/F分離洗浄する。次いで、Aの場合は前記解離した珪藻類被殻単体又はビオチン蛍光標識DNAに結合した珪藻類被殻を検境し、Bの場合は前記解離した珪藻類被殻に結合した当該DNAを染色して検鏡し又は当該DNAをPCR増幅して検量線を得て、珪藻類被殻を定量的に精度良く検出し、又は前記解離した珪藻類被殻に結合したビオチン蛍光標識DNAの蛍光強度を測定して珪藻類被殻定量的に精度良く検出するものである。この検出方法により、従来方法に比較して次の優れた具体的な作用効果を呈する。1.方法の効果意義従来、珪藻類被殻のクリーニング後、直接プレパラート上に展開乾燥して顕微鏡下で観察するのみであったが、この検出法を採用することにより、残存夾雑物により検鏡、発見が難しかった珪藻類被殻を清浄な状態で観察することができるようになった。特に、溺死の証明においては、炭粉、変成した脂肪質などの検鏡を妨げていたものがほとんど見あたらない。個数既知の被殻を使った実験では、ほぼ100の回収率を示すことから、被殻は添加した当該DNAを介してシリカコートビーズにほぼ完全に結合しているものと思われる。加えて、洗浄操作後の水の添加により、被殻は完全に添加水中に遊離せられるものと考えられた。特に、シリカコートビーズに磁性ビーズを使えば、被殻をトラップした状態での洗浄操作に磁石を使ってビーズを集めることができるので、操作手技による損失を防ぐことができる。本法は、操作が極めて簡単で短時間の処理で十分にその効果を発揮できることから、非常に有用性が高いものと考えられる。2.方法との効果意義従来、珪藻類被殻のクリーニング後、直接プレパラート上に展開乾燥して顕微鏡下で観察するのみであったが、この検出法を採用することにより、残存夾雑物により検鏡、発見が難しかった珪藻類被殻を清浄な状態で観察することができるようになった。特に、溺死の証明においては、炭粉、変成した脂肪質などの検鏡を妨げていたものがほとんど見あたらないばかりでなく、染色された被殻を顕微鏡下で探すだけでよいので、検鏡にかかる時間が大幅に短縮され、写真撮影時のフォーカス設定も容易であった。被殻に結合したビオチン、蛍光標識したDNAは既存の染色法を使って染色することによって、間接的に被殻を染色した状態で観察することができる。標識されたビオチンは、アルカリフォスファターゼやベータガラクトシダーゼ、ペルオキシダーゼなどの酵素を標識したスレプトアビジンとそれぞれの酵素に対応した基質とによって染色される。当該DNAの標識に使われるのはビオチンのみでなく、ジゴキシゲニンでもよい。短鎖DNAの蛍光標識には様々な蛍光色素が使用可能であるが、特にFITCなどが一般的であり、この場合、そのまま蛍光顕微鏡による観察が可能である。また、被殻に未標識の短鎖DNAを結合しても、結合した短鎖DNAを、一般的な組織染色で使われるフォイルゲン反応、ヌクレアーファーストレッドなどの核酸染色法により染色することができる。さらに、MupidBlueなどの一般的なDNAの染色剤によっても染色することができるだけでなく、各種蛍光染色剤も使用できる。また、タンパク質やDNAの高感度染色法として知られる銀染色法なども適用できる。被殻はすでに染色されているので、一般的な低屈折率の封入剤を使って、永久標本として保存することが可能である。3.方法の効果意義充分量の短鎖DNAをあらかじめコートしたシリカコートの磁性ビーズと配列既知の長鎖DNAを使って被殻をサンドイッチすることが可能であった。これは、ポリクローナル抗体や複数種類のモノクローナル抗体を使って抗原をサンドイッチして定量的に検出する非競合法と同じ原理を有する。2次的に反応する配列既知の長鎖DNAの量は、固相となる磁性ビーズに結合した被殻の量に比例して増加する。洗浄により未反応の長鎖DNAを取り除いた後、加水して長鎖DNAを水中に遊離することができる。長鎖DNAは配列が既知であるため、あらかじめターゲットとなる領域に対してプライマーを合成しておくことができる。遊離した長鎖DNAを鋳型としてPCR反応を行い、増幅されたDNA量の定量を行えば、間接的に固相に結合した被殻の量を測定することができる。このとき、あらかじめ被殻の量を顕微鏡検査により定量してある標準液に対しても同様の操作を行い、検量線を作製する。この方法を使えば、単純なPCR法を用いた実験でも、数十個単位の被殻を定量的に検出することが可能であった。さらに高感度なリアルタイムPCR法などを導入すれば、数個単位、理論的には1個の被殻でも検出可能である。また、固相となる磁性シリカビーズは、pHの変化によって当該DNAを吸着し、溶出する性質を持つメルク社のMagPrepSilicaなども使用可能である。このMagPrepSilicaは、酸性条件下でDNAを吸着し、pH8以上のアルカリ条件下でDNAを遊離する性質を持つので、中性の水を使ってもDNAは遊離することはないため、固相の洗浄、保存に適している。4.方法の効果意義磁性金属球にシリカコートしたシリカコートビーズ磁性ビーズとも言うに充分量の短鎖DNAをあらかじめコートし、これに配列既知の短鎖DNAを使って被殻をコート短鎖DNAとサンドイッチすることが可能である。これは、ポリクローナル抗体や複数種類のモノクローナル抗体を使って抗原をサンドイッチして定量的に検出する非競合法と同じ原理を有する。2次的に反応する配列既知の短鎖DNAの量は、固相となる前記の磁性ビーズに結合した被殻の量に比例して増加する。洗浄により未反応の短鎖DNAを取り除いた後、固相にトラップされた被殻と2次的に結合した短鎖DNAをそのまま別のチューブに移し、PCR反応を行う。2次的な短鎖DNAは配列が既知であるため、あらかじめターゲットとなる領域に対してプライマーを合成しておくことができる。また、固相にあらかじめ結合する短鎖DNAとは配列の全く異なるものを使用する。固相として使う短鎖DNAをコートしたシリカコートビーズは、粒径が2~4μlであるため、これらと一緒にPCR反応を行っても、反応の妨げにはならない。PCR増幅されたDNA量の定量を行えば、間接的に固相に結合した被殻の量を測定することができる。このとき、あらかじめ被殻の量を顕微鏡検査により定量してある標準液に対しても同様の操作を行い、検量線を作製する。サンドイッチする2次的な短鎖DNAは、長鎖DNAよりも分子量分子構造が小さいため、被殻に結合する量は、長鎖DNAよりも多くなることが実証されている。したがって、さらに高感度なリアルタイムPCR法などを導入すれば、数個単位、理論的には1個の被殻でも検出可能である。5.方法の効果意義充分量の短鎖DNAをあらかじめコートしたシリカコートの磁性ビーズとビオチン、蛍光標識した短鎖DNAを使って被殻をサンドイッチすることが可能である。これは、ポリクローナル抗体や複数種類のモノクローナル抗体を使って抗原をサンドイッチして定量的に検出する非競合法と同じ原理を有する。2次的に反応するビオチン、蛍光標識した短鎖DNAの量は、固相となる磁性ビーズに結合した被殻の量に比例して増加する。洗浄により未反応のビオチン、蛍光標識した短鎖DNAを取り除いた後、固相にトラップされた被殻と2次的に結合した短鎖DNAに標識されたビオチン、蛍光量を適当な基質、或いは、測定装置を使って測定する。被殻に結合したビオチン、蛍光標識したDNAは既存の発色法を使って測定することができる。標識されたビオチンは、アルカリフォスファターゼやベータガラクトシダーゼ、ペルオキシダーゼなどの酵素を標識したスレプトアビジンとそれぞれの酵素に対応した基質とを組み合わせて使用される。蛍光基質を使った蛍光測定法の方が一般的にはより高感度に測定できるビオチン、蛍光標識した短鎖DNAの量の定量を行えば、間接的に固相に結合した被殻の量を測定することができる。このとき、あらかじめ被殻の量を顕微鏡検査により定量してある標準液に対しても同様の操作を行い、検量線を作製する。また、固相となる磁性シリカビーズは、pHの変化によってDNAを吸着し、溶出する性質を持つメルク社のMagPrepSilicaなども使用可能である。このMagPrepSilicaは、酸性条件下でDNAを吸着し、pH8以上のアルカリ条件下でDNAを遊離する性質を持つので、中性の水を使ってもDNAは遊離することはないため、固相の洗浄、保存に適している。さらに、被殻に結合した短鎖DNAも水中には遊離しないため、ビオチンや蛍光色素、或いは、各種酵素を標識したストレプトアビジンなどを変性させることなく穏和な条件下で反応を完成させ、測定することができる。本発明の前記各検出の方法~を実施するための態様は次の表1及び図1~図6に記載の通りである。尚、シリカコートビーズを単にシリカビーズと略称する。本例は前記特徴の方法の実施例であり、具体的な技術条件と効果を表2にて紹介する。本例は前記特徴の方法との実施例であり、具体的な技術条件と効果を表3にて紹介する。本例は前記特徴の方法の実施例であり、具体的な技術条件と効果を表4にて紹介する。本例は前記特徴の方法の実施例であり、具体的な技術条件と効果を表5にて紹介する。本例は前記特徴の方法の実施例であり、具体的な技術条件と効果を表6にて紹介する。