オオムギの抽出物を有効成分として含有するメラノサイト分化誘導促進剤。前記抽出物が水及び低級アルコールから成る群より選択される溶媒により抽出された抽出物である、請求項1記載のメラノサイト分化誘導促進剤。低級アルコールがエタノールである、請求項2記載のメラノサイト分化誘導促進剤。オオムギがオオムギの茎、葉及び種子から成る群より選択される器官である、請求項1~3のいずれか1項記載のメラノサイト分化誘導促進剤。請求項1~4のいずれか1項記載のメラノサイト分化誘導促進剤を含有する色素異常症、白髪又は難聴の改善又は治療用組成物。請求項1~4のいずれか1項記載のメラノサイト分化誘導促進剤存在下で幹細胞を培養する工程を含む、メラノサイト分化誘導促進方法。幹細胞が胚性幹細胞である、請求項6記載の方法。前記培養が、幹細胞をフィーダー細胞上で培養することを含む、請求項6又は7記載の方法。前記培養に使用する培地が、ウシ胎児血清、デキサメタゾン、塩基性線維芽細胞増殖因子、コレラトキシン及びエンドセリン3を含有する、請求項6~8のいずれか1項記載の方法。幹細胞からメラノサイトへの分化誘導系において、幹細胞からメラノサイトへの分化を促進する素材が見出されば、これまでにない、より根本的な色素異常症、白髪、難聴等のメラノサイトが関与する疾患の治療剤及び治療法の開発が期待される。そこで、本発明は、上述した実情に鑑み、幹細胞からメラノサイトへの分化促進活性を有する素材を見出し、これまでにない根本的な色素異常症、白髪及び難聴の改善又は治療用組成物を提供することを目的とする。上記課題を解決するため鋭意検討を行った結果、幹細胞からメラノサイトへの分化誘導系を用いることにより、メラノサイトの発生、分化、増殖及びメラニン合成の全てを試験管内で再現できることを確認し、さらに本誘導系をスクリーニング系として用いることにより、イネ科オオムギ属に属するオオムギの抽出物がメラノサイトの分化を促進する優れた効果を有することを見出し、本発明を完成するに至った。すなわち、本発明は、以下を包含する。1オオムギの抽出物を有効成分として含有するメラノサイト分化誘導促進剤。2前記抽出物が水及び低級アルコールから成る群より選択される溶媒により抽出された抽出物である、1記載のメラノサイト分化誘導促進剤。3低級アルコールがエタノールである、2記載のメラノサイト分化誘導促進剤。4オオムギがオオムギの茎、葉及び種子から成る群より選択される器官である、1~3のいずれか1記載のメラノサイト分化誘導促進剤。51~4のいずれか1記載のメラノサイト分化誘導促進剤を含有する色素異常症、白髪又は難聴の改善又は治療用組成物。61~4のいずれか1記載のメラノサイト分化誘導促進剤存在下で幹細胞を培養する工程を含む、メラノサイト分化誘導促進方法。7幹細胞が胚性幹細胞である、6記載の方法。8前記培養が、幹細胞をフィーダー細胞上で培養することを含む、6又は7記載の方法。9前記培養に使用する培地が、ウシ胎児血清、デキサメタゾン、塩基性線維芽細胞増殖因子、コレラトキシン及びエンドセリン3を含有する、6~8のいずれか1記載の方法。本発明によれば、幹細胞からメラノサイトへの分化誘導を顕著に促進することで幹細胞からメラノサイトの作製を極めて効率的に行うことができる。従って、本発明は、メラノサイトが関与する色素異常症、白髪又は難聴の治療、予防及び改善の分野並びにメラノサイトを使用する組織再生の分野において大きく貢献できるものであり、医学、医薬品、医薬部外品、美容及び健康分野への応用が可能である。以下、本発明を詳細に説明する。未分化な幹細胞からメラノサイトへの分化誘導系をスクリーニング系として用いていることにより、メラノサイトの分化を促進する素材の探索を行ったところ、イネ科オオムギ属に属するオオムギの抽出物が、幹細胞からメラノサイトへの分化誘導促進活性を有することを見出した。従来において、マウスメラノーマ細胞等を用いた試験により、オオムギの抽出物がメラニン合成抑制効果を有することが知られていた。しかしながら、オオムギの抽出物が幹細胞からメラノサイトへの分化誘導促進活性を有することは従来において知られていなかった。従って、本発明に係るメラノサイト分化誘導促進剤は、オオムギの抽出物を有効成分として含有するものである。本発明に係るメラノサイト分化誘導促進剤によれば、幹細胞からメラノサイトへの分化を促進することで、メラノサイトの分化を制御することができる。また、本発明に係るメラノサイト分化誘導促進剤によれば、メラノサイトの分化を制御することで、メラノサイトが関連する色素異常症、白髪及び難聴等の疾患を根本的に予防、改善及び治療することができる。さらに、幹細胞からメラノサイトへの分化を促進するための研究用試薬として、本発明に係るメラノサイト分化誘導促進剤を使用することもできる。本発明においては、先ずオオムギの抽出物を準備する。本発明において使用するオオムギとしては、例えば頴や頴果が紫色、黒色、白色等であるオオムギが挙げられる。場合によっては、茎や葉も有色であるオオムギも本発明において使用することができる。例えば、紫色の品種としては、OUC321、CI158、CI244等が挙げられる。黒色の品種としては、PI232、SV43等が挙げられる。白色の品種としては、OUJ042、OUJ332、OUJ392、OUJ625等が挙げられる。これらのオオムギの品種は、岡山大学資源生物科学研究所大麦野生植物資源研究センターから入手することができる。以下においては、紫色の系統のオオムギを紫麦、黒色の系統のオオムギを黒麦、有色でない系統のオオムギを白麦と称する。また、オオムギの抽出物の調製において、使用するオオムギの部位としては、特に限定されるものではないが、例えば植物体全体、器官等が挙げられ、特に茎、葉及び種子等の器官を使用することが好ましい。さらに、抽出にオオムギの植物体そのままを使用してよく、あるいは乾燥、粉砕、細切等の処理により得られたオオムギの調製物を使用することもできる。例えば、オオムギの茎葉、種子、根及び発芽種子等の植物の一部又は全草の乾燥物を、オオムギの抽出物の調製に使用することができる。オオムギを溶媒抽出に供することで、オオムギの抽出物を得ることができる。抽出に使用する溶媒としては、例えば、水、低級アルコール類、アセトニトリル、エステル類、エーテル類、無機酸等が挙げられる。水、低級アルコール及び液状多価アルコールが好ましく、水及びエタノールが特に好ましい。これらの溶媒は単独で、又は2種以上を混合して用いても良い。また、これら溶媒に酸やアルカリを添加してpH調整を行うこともできる。特に、エタノールを溶媒として使用する場合には、例えば50~100、好ましくは50~60の濃度のエタノールを使用することができる。上述の溶媒を用いて、オオムギを溶媒抽出に供する。オオムギに対する溶媒の割合は、例えば1~50、好ましくは5~20が挙げられる。溶媒抽出方法は、特に限定されないが、加熱による抽出が好ましい。例えば、オオムギに水を加え、95~100°Cにおける熱水抽出を行うことで、オオムギ抽出物を得ることができる。あるいは、オオムギに低級アルコールを添加し、常温で抽出を行うことで、オオムギ抽出物を得ることができる。溶媒抽出後、得られた溶媒相自体をオオムギ抽出物とすることができる。あるいは、必要に応じて、得られた溶媒相を、濃縮、希釈、濾過、乾燥等の処理及び活性炭等による脱色処理、脱臭処理等に供して、得られた生成物をオオムギ抽出物とすることができる。特に、抽出した溶液を濃縮乾固、噴霧乾燥、凍結乾燥等の処理に供し、得られた乾燥物をオオムギ抽出物として用いることが好ましい。このようにして得られたオオムギ抽出物を本発明に係るメラノサイト分化誘導促進剤の有効成分とする。本発明に係るメラノサイト分化誘導促進剤は、医薬、医薬部外品、化粧料又は飲食品として使用することができる。また、上述のオオムギ抽出物を、医薬、医薬部外品、化粧料又は飲食品の製造のために使用することもできる。特に、本発明に係る分化誘導促進剤は、色素異常症、白髪又は難聴の改善又は治療用組成物として、又は当該組成物の製造のために使用することができる。さらに、本発明に係る分化誘導促進剤は、例えば細胞培養用添加剤、研究用試薬、医療用試薬、細胞移植剤等として使用することができる。ここで、色素異常症としては、例えばワーデンブルグ症候群、全身性白皮症I型、尋常性白斑、限局性白皮症、遠心性後天性白斑、Vogt小柳原田病、老人性白斑、脱色素性母斑、偽梅毒性白斑等が挙げられる。さらに、本発明に係るメラノサイト分化誘導促進剤を医薬、医薬部外品、化粧料又は飲食品として利用する場合には、その取扱い説明書又はパッケージに、オオムギ抽出物を含有し、メラノサイト分化誘導促進活性を有することを特徴とする旨を表示することができる。本発明に係るメラノサイト分化誘導促進剤を、医薬又は医薬部外品として使用する場合には、剤形としては、特に限定されるものではないが、例えば、内服剤、外用剤、水剤、エキス剤、ローション剤、乳剤等並びに注射剤が挙げられる。当該医薬又は医薬部外品には、オオムギ抽出物の他に、助剤、安定化剤、湿潤剤、乳化剤、吸収促進剤及び界面活性剤等の薬学的に許容される担体を任意に組合せて配合することができる。本発明に係るメラノサイト分化誘導促進剤を化粧料として使用する場合には、剤形としては、特に限定されるものではないが、例えば、クリーム、ローション、フォーム、エッセンス、ファンデーション、パック、スティック及びパウダー等が挙げられる。当該化粧料には、オオムギ抽出物の他に、化粧料成分として一般に使用されている油分、界面活性剤、紫外線吸収剤、アルコール類、キレート剤、pH調整剤、防腐剤、増粘剤、色素類、香料等を任意に組合せて配合することができる。本発明に係るメラノサイト分化誘導促進剤におけるオオムギ抽出物の配合量は、特に限定されるものではないが、乾燥物として計算して、全組成の000001~10重量とすることが好ましく、00001~1重量とすることが最も好ましい。全組成の000001重量未満とすると、メラノサイト分化誘導促進効果が十分に発揮されにくい場合がある。以上に説明した本発明に係るメラノサイト分化誘導促進剤を、ヒトを含めた動物に適用することで、幹細胞からメラノサイトへの分化誘導を促進できる。また、本発明に係るメラノサイト分化誘導促進剤を、生体内の幹細胞に対して直接作用させることで、メラノサイトへの分化促進が有効な疾患を治療することができる。特に、本発明に係るメラノサイト分化誘導促進剤によれば、色素異常症、白髪及び難聴を治療、予防又は改善することができる。さらに、本発明に係るメラノサイト分化誘導促進剤を生体内の幹細胞に対して直接作用させることで、生体外で幹細胞をメラノサイトへ分化させて移植する必要がないことにより、メラノサイトへの分化に要する時間を短縮することができ、移植に必要とされる細胞数を減らすことができる。なお、本発明に係るメラノサイト分化誘導促進剤の幹細胞からメラノサイトへの分化誘導促進活性は、下記の本発明に係るメラノサイト分化誘導促進方法に関して記載する評価方法に準じて評価することができる。一方、本発明に係るメラノサイト分化誘導促進方法は、上述の本発明に係るメラノサイト分化誘導促進剤存在下で幹細胞を培養することで、当該幹細胞からメラノサイトへの分化誘導を促進する方法である。本方法によれば、幹細胞からメラノサイトへの分化誘導を促進することで、メラノサイトを製造することができる。換言すれば、本方法は、メラノサイトの製造方法とすることもできる。本方法で使用する幹細胞としては、メラノサイトに分化する幹細胞であればいずれのものであってよく、例えば胚性幹細胞;遺伝子導入等により人工的に作製された幹細胞等が挙げられる。これら幹細胞は、初代培養細胞、継代培養細胞、凍結細胞のいずれであってもよい。好ましくは、ES細胞又は骨髄、血液、皮膚若しくは脂肪組織由来の幹細胞を使用することができる。例えばiPS細胞、真皮組織由来幹細胞:85360及び脂肪組織由来幹細胞からメラノサイトへの分化誘導が知られており、これら幹細胞を本方法で使用する幹細胞とすることができる。また、幹細胞の分化の方向性及び分化の過程等について同等の特性を持っていれば、全ての哺乳動物由来の幹細胞を使用することができる。例えば、ヒト、サル、マウス、ラット、モルモット、ウサギ、ネコ、イヌ、ウマ、ウシ、ヒツジ、ヤギ、ブタ等の哺乳動物由来の幹細胞を使用することができる。本方法において、幹細胞培養培地又は幹細胞からメラノサイトへの分化誘導培地、また、これら培地と同時に用いる添加剤としては、限定されるものではないが、例えば以下のものが挙げられる。培地としては、増殖因子として白血球遊走阻止因子の少なくともいずれか1種を添加した、細胞の生存に必要な成分を含む基本培地が挙げられる。当該基本培地としては、例えば、DulbeccosModifiedEagleMedium、MinimumEssentialMedium、RPMI1640、BasalMediumEagle、DulbeccosModifiedEagleMedium:NutrientMixtureF12、GlasgowMinimumEssentialMedium、ハンクス液、腫瘍壊死因子、ビタミン類、インターロイキン類、インスリン、トランスフェリン、ヘパリン、ヘパラン硫酸、コラーゲン、フィブロネクチン、プロゲステロン、セレナイト、B27サプリメント、N2サプリメント、ITSサプリメント、抗生物質等を含有してもよい。また、上記以外には、1~20の含有率でFBS等の血清が培地に含まれることが好ましい。しかしながら、血清はロットの違いにより成分が異なり、その効果にバラツキがあるため、ロットチェックを行った後に使用することが好ましい。なお、幹細胞培養又は幹細胞からメラノサイトへの分化誘導における培地の交換は2~3日に1回行うことが好ましく、より好ましくは毎日行うことが好ましい。幹細胞培養又は幹細胞からメラノサイトへの分化誘導に使用する容器としては、例えば使い捨てのシャーレ、マイクロタイタープレート等が挙げられる。本方法においては、先ず幹細胞を準備する。幹細胞の培養においては、未分化状態を保つために、マイトマイシンCで処理したMEF細胞等をフィーダー細胞として使用する。培地は、LIF、Lグルタミン等を含有することが好ましい。例えば、培地含有容器底面上にフィーダー細胞をコンフルエントの状態まで培養し、その上に幹細胞を播種し、幹細胞を、所定の時間及び培養温度で培養する。培養後、フィーダー細胞から分離した幹細胞を回収し、メラノサイト分化誘導に使用する。次いで、本方法では、本発明に係るメラノサイト分化誘導促進剤存在下で幹細胞を培養し、幹細胞からメラノサイトへの分化誘導を促進する。特に、培養は、メラノサイト分化誘導系において行われる。メラノサイト分化誘導系としては、例えばフィーダー細胞上への幹細胞の播種、及びFBS、DEX、bFGF等のメラノサイトの分化を促す因子を添加した培地の使用が挙げられる。フィーダー細胞としては、例えばマウスやヒトのストローマ細胞であるST2細胞、OP9細胞、PA6細胞、StromaNKtertや繊維芽細胞等が挙げられる。コンフルエント状態のフィーダー細胞上への幹細胞の播種個数は、24wellプレートの1穴当たり、例えば100~1000個、好ましくは300~600個が挙げられる。また、FBSは、培地に対して例えば1~20の濃度、好ましくは5~15の濃度で添加する。DEXは、培地に対して例えば10~500nMの濃度、好ましくは50~200nMの濃度で添加する。bFGFは、培地に対して例えば1~100pMの濃度、好ましくは10~40pMの濃度で添加する。CTは、培地に対して例えば10~1000ngmLの濃度、好ましくは50~200ngmLの濃度で添加する。一方、メラノサイト分化誘導系に使用される培地に対する本発明に係るメラノサイト分化誘導促進剤の添加濃度は、上述の本発明に係るメラノサイト分化誘導促進剤におけるオオムギ抽出物の配合量に準じて適宜決定することができるが、例えば1~500μgmL、好ましくは10~100μgmLの濃度が挙げられる。また、メラノサイト分化誘導期間中、本発明に係るメラノサイト分化誘導促進剤を、例えば1日~5日に1回、定期的に培地に添加する。メラノサイト分化誘導系における培養条件としては、例えば35~38°Cで20~30日間が挙げられる。幹細胞からメラノサイトへの分化誘導促進は、例えば、本発明に係るメラノサイト分化誘導促進剤非存在下での幹細胞と比較して、該促進剤存在下で培養した該幹細胞においてメラニン合成量又はメラノサイトマーカー遺伝子の発現が増加されているか否かを決定することで評価することができる。メラニン合成及びメラノサイトマーカー遺伝子の発現は、幹細胞からメラノサイトへの分化の指標である。ここで、メラノサイトマーカー遺伝子の発現の増加とは、幹細胞におけるmRNAレベル又はタンパク質レベルでのメラノサイトマーカー遺伝子発現の増加を意味する。メラノサイトマーカー遺伝子としては、例えばMitfM1323040及びTyrp11443744が挙げられる。メラニン合成量の評価方法では、培養後、メラニン合成量と細胞数とを定量し、細胞数当たりのメラニン合成量を算出する。細胞数測定において、例えば市販品のCellCountingKit8等の測定後も細胞を回収できるキットを用いることが望ましい。また、メラニンの定量方法としては、例えば分化誘導後に細胞数を測定した細胞を2NNaOHで60°Cで2時間溶解し、溶解物を475nmの吸光度で測定する方法が挙げられるが、これに限定されるものではない。次いで、得られた細胞数当たりのメラニン合成量を、本発明に係るメラノサイト分化誘導促進剤不在下で培養した幹細胞における細胞数当たりのメラニン合成量と比較する。一方、メラノサイトマーカー遺伝子発現の評価方法では、培養後の細胞からmRNA又はタンパク質を抽出する。次いで、得られたmRNA又はタンパク質中のメラノサイトマーカー遺伝子発現量を、本発明に係るメラノサイト分化誘導促進剤不在下で培養した幹細胞における当該遺伝子発現量と比較する。mRNAレベルでは、例えばメラノサイトマーカー遺伝子に特異的なプライマーやプローブを用いたRTPCR、定量PCRやノーザンブロッティングによって確認する方法が挙げられる。また、タンパク質レベルでは、例えばメラノサイトマーカー遺伝子によりコードされるタンパク質に特異的な抗体を用いたELISA、フローサイトメトリー、ウエスタンブロッテイング等の免疫学的方法が挙げられる。本発明に係るメラノサイト分化誘導促進剤不在下で培養した幹細胞に比べて、本発明に係るメラノサイト分化誘導促進剤存在下で培養した幹細胞において、メラニン合成量又はメラノサイトマーカー遺伝子の発現が有意に増加した場合に、幹細胞からメラノサイトへの分化誘導が促進され、メラノサイトを製造することができたと判定することができる。以上に説明する本方法により得られたメラノサイトは、一般的に体外で培養した後、創傷部や組織を再生させたい部位に直接注射等で移植することが可能である。すなわち、得られたメラノサイトは、細胞医薬品や医薬組成物として使用され、例えば白斑、白髪、その他の色素異常症等の治療に用いることができる。以下、実施例を用いて本発明をより詳細に説明するが、本発明の技術的範囲はこれら実施例に限定されるものではない。実施例1オオムギからの溶媒抽出物の製造例以下に、オオムギを用いた溶媒抽出物の製造例を示す。1.製造例1紫麦の熱水抽出物紫麦の茎葉5gに精製水50mLを加え、95~100°Cで1時間抽出を行った。抽出後、抽出液を濾過に供し、得られた濾液を濃縮及び凍結乾燥に供することで、紫麦の熱水抽出物を153g得た。2.製造例2紫麦の50エタノール抽出物紫麦の茎葉5gに50エタノール50mLを加え、常温で5日間抽出を行った。抽出後、抽出液を濾過に供し、得られた濾液を濃縮乾固に供することで、紫麦の50エタノール抽出物を116g得た。3.製造例3紫麦の熱水抽出物紫麦の種子5gに精製水50mLを加え、95~100°Cで1時間抽出を行った。抽出後、抽出液を濾過に供し、得られた濾液を濃縮及び凍結乾燥に供することで、紫麦の熱水抽出物を092g得た。4.製造例4紫麦の50エタノール抽出物紫麦の種子5gに50エタノール50mLを加え、常温で5日間抽出を行った。抽出後、抽出液を濾過に供し、得られた濾液を濃縮乾固に供することで、紫麦の50エタノール抽出物を038g得た。5.製造例5黒麦の熱水抽出物黒麦の茎葉5gに精製水50mLを加え、95~100°Cで1時間抽出を行った。抽出後、抽出液を濾過に供し、得られた濾液を濃縮及び凍結乾燥に供することで、黒麦の熱水抽出物を095g得た。6.製造例6黒麦の50エタノール抽出物黒麦の茎葉5gに50エタノール50mLを加え、常温で5日間抽出を行った。抽出後、抽出液を濾過に供し、得られた濾液を濃縮乾固に供することで、黒麦の50エタノール抽出物を080g得た。7.製造例7黒麦の熱水抽出物黒麦の種子5gに精製水50mLを加え、95~100°Cで1時間抽出を行った。抽出後、抽出液を濾過に供し、得られた濾液を濃縮及び凍結乾燥に供することで、黒麦の熱水抽出物を053g得た。8.製造例8黒麦の50エタノール抽出物黒麦の種子5gに50エタノール50mLを加え、常温で5日間抽出を行った。抽出後、抽出液を濾過に供し、得られた濾液を濃縮乾固に供することで、黒麦の50エタノール抽出物を041g得た。9.製造例9白麦の熱水抽出物白麦の茎葉5gに精製水50mLを加え、95~100°Cで1時間抽出を行った。抽出後、抽出液を濾過に供し、得られた濾液を濃縮及び凍結乾燥に供することで、白麦の熱水抽出物を125g得た。10.製造例10白麦の50エタノール抽出物白麦の茎葉5gに50エタノール50mLを加え、常温で5日間抽出を行った。抽出後、抽出液を濾過に供し、得られた濾液を濃縮乾固に供することで、白麦の50エタノール抽出物を098g得た。11.製造例11白麦の熱水抽出物白麦の種子5gに精製水50mLを加え、95~100°Cで1時間抽出を行った。抽出後、抽出液を濾過に供し、得られた濾液を濃縮及び凍結乾燥に供することで、白麦の熱水抽出物を074g得た。12.製造例12白麦の50エタノール抽出物白麦の種子5gに50エタノール50mLを加え、常温で5日間抽出を行った。抽出後、抽出液を濾過に供し、得られた濾液を濃縮乾固に供することで、白麦の50エタノール抽出物を053g得た。実施例2幹細胞からメラノサイトへのオオムギ抽出物の分化誘導促進効果の評価以下に、実施例1において製造した製造例1~12のオオムギ抽出物を用いて、幹細胞からメラノサイトへの分化誘導促進効果を評価し、該抽出物のメラノサイトへの分化誘導促進剤としての効果について確認した。本実施例では、過去に山根らが開発したマウス胚性幹細胞からのメラノサイト分化誘導系を用いて、オオムギ抽出物の効果を検討した。本誘導系を用いることで、メラノサイトの発生から成熟までの全ての段階において素材の評価を行うことが可能となる。以下に詳細を説明する。35mmシャーレにMMC処理済みのMEF細胞をコンフルエントの状態で培養し、その上にマウスES細胞を10×104~20×104個播種し、37°Cにおいて5CO2インキュベーターで前培養した。使用した培地は、DMEMにchemicon社製のES細胞用添加因子を推奨濃度で添加した後、FBSを15添加したものであった。次いで、ST2細胞を24wellプレート上でコンフルエントになるまで培養し、そこにMEF細胞から分離した上述の培養ES細胞を250~500個播種した。当該培養物を、αMEMに10ウシ胎児血清、100nMデキサメタゾン、20pM塩基性線維芽細胞増殖因子、10pMコレラトキシン及び100ngmLエンドセリン3を添加した分化誘導培地で培養し、ES細胞をメラノサイトへ分化誘導した。顕微鏡観察により、誘導後6日目にはST2細胞上に形成されたES細胞のコロニーが広がり始め、18日目前後でコロニーの周りにメラノサイトが出現した。誘導後24日目までに、出現したメラノサイトがさらにメラニン合成を行う様子が観察された。以上より、本誘導系を用いることにより、メラノサイトの発生、分化及びメラニン合成の全てを再現できることを確認した。本誘導系において、上述の分化誘導培地に各濃度でオオムギ抽出物を継続して添加し、24日間の分化誘導を実施した。その後、CellCountingKit8を用いて相対細胞数を定量した。一方、細胞数定量後、細胞をPBSで3回洗浄した後、2NNaOHを用いて60°Cで2時間溶解し、溶解物について475nmの吸光度を測定した。その結果、細胞数当たりのメラニン合成量は濃度依存的に増加した。これらの試験結果を以下の表1~表3に示す。表1~表3に示すように、オオムギ抽出物の全てに、陽性対照であるエンドセリン163110と同様の顕著なメラノサイト分化誘導促進効果が認められた。以上より、オオムギ抽出物が極めて優れた幹細胞からのメラノサイト分化誘導促進効果を有することが明らかとなり、オオムギ抽出物のメラノサイト分化誘導促進剤としての効果を確認した。