"金粒子を含有する容器に体液を充填し、培養し、また、治療有効性タンパク質を体液から形成させる、容器内で少なくとも1つの治療有効性タンパク質またはタンパク質混合物を製造する方法。前記金粒子は、試験管内培養後に体液から除去して廃棄される、請求項1に記載の方法。前記金粒子および体細胞およびその他の不溶性凝集物は、試験管内培養後に体液から除去して廃棄される、請求項1に記載の方法。前記金粒子は所定大きさを有する、特に微細粒子および/またはナノ粒子である、請求項1~3のうちいずれか1項に記載の方法。前記金粒子は、1mlの体液当たり0.1mg~10mg、好ましくは1mlの体液当たり0.3mgの量で容器内に存在する、請求項1~4のうちいずれか1項に記載の方法。前記金粒子は、約1μmの大きさであり、また、10ml当たり103~104の金粒子量で存在する、請求項1~5のうちいずれか1項に記載の方法。前記容器は注射器である、請求項1~6のうちいずれか1項に記載の方法。前記容器は密封可能なポーチである、請求項1~7のうちいずれか1項に記載の方法。前記体液は血液である、請求項1~8のうちいずれか1項に記載の方法。体液で充填された前記容器は、20°C~41°C、好ましくは37°Cの温度で、12~72時間、好ましくは24時間培養される、請求項1~9のうちいずれか1項に記載の方法。前記治療有効性タンパク質はゲルゾリンである、請求項1~10のうちいずれか1項に記載の方法。体液中の治療有効性タンパク質を試験管内で生合成および蓄積試験管内誘導するための容器であって、前記容器は、金粒子を含有し、体液サンプルを収集し、保存し、再分配するのに好適であり、また、中空針とカップリング可能であるためにその内容物が前記中空針によって注射できる、容器。前記金粒子は、所定大きさを有し、特に微細粒子および/またはナノ粒子である、請求項12に記載の容器。前記金粒子は、1mlの体液当たり0.1mg~10mg、好ましくは1mlの体液当たり0.3mgの量で容器に存在する、請求項12または13に記載の容器。前記容器は注射器である、請求項12~14のうちいずれか1項に記載の容器。前記容器は密封可能なポーチである、請求項12~14のうちいずれか1項に記載の容器。前記体液は、自己由来autologousまたは相同homologousの血液である、請求項12~16のうちいずれか1項に記載の容器。前記治療有効性タンパク質はゲルゾリンである、請求項12~17のうちいずれか1項に記載の容器。自己由来autologousまたは相同homologousの血液および金粒子を含む薬物として用いるための物質混合物。ゲルゾリンに対する関連標準血液レベルの少なくとも2倍であるゲルゾリン含量を有する、請求項19に記載の物質混合物。前記薬物は、ゲルゾリンの欠乏と関連する疾病の治療用に好適なものとして考慮される、請求項19または20に記載の物質混合物。前記薬物は、組織退行と関連する疾病の治療用に好適なものとして考慮される、請求項19または20に記載の物質混合物。前記疾病は関節症であり、また前記薬物は関節症の治療用に好適なものとして考慮される、請求項22に記載の物質混合物。金粒子を含有する容器内に血清を収集し、前記血清と金粒子の混合物を培養し、次に前記金粒子を血清から除去して廃棄することにより、薬物として用いるためのサイトカイン-濃縮されたおよびゲルゾリン-濃縮された血清。ゲルゾリンに対する関連標準血液レベルの少なくとも2倍であるゲルゾリン含量を有する、請求項24に記載の血清。前記金粒子および血液細胞および/またはその他の不溶性成分は、血清から除去して廃棄される、請求項24または25に記載の血清。前記金粒子は約1μmの大きさである、請求項24~26のうちいずれか1項に記載の血清。前記金粒子は、10ml容器当たり103~104の金粒子量、または1mlの血液/容器当たり1μm直径を有する金粒子量0.3mgで存在する、請求項24~27のうちいずれか1項に記載の血清。前記薬物は、組織退行と関連する疾病の治療用に好適なものとして考慮される、請求項24~28のうちいずれか1項に記載の血清。前記疾病は関節症であり、また、前記薬物は関節症の治療用に好適なものとして考慮される、請求項29に記載の血清。前記薬物は、ゲルゾリンの欠乏と関連する疾病の治療用に好適なものとして考慮される、請求項24~28のうちいずれか1項に記載の血清。本発明の目的は、生成されたタンパク質が相当に多量に存在し、また、好ましくない副作用を避けるようにする方法を開発するかまたは変形することにある。前記目的は、容器が金粒子を含有する、最初に言及した類型の方法を提供することによって達成される。用語容器は、以下では、液体を所定時間保存するための閉じることができる器または閉じることができる保存器を意味し、前記器または保存器は収容する液体に対して漏れ防止性である。金を薬物として用いることは、医薬において昔から知られている。19世紀末頃、金は特に結核治療のための薬物として用いられた。リューマチ性関節炎が一種の感染疾病という間違った仮定により、金がこの疾病に対する薬物として用いられた。この療法は成功的であって、今日まで多年間用いられたKeanandKean2008。ヒト軟骨細胞に対する試験管内invitro研究は、金化合物金チオリンゴ酸塩:aurothiomalateが軟骨細胞による酸化窒素NOの生成を抑制することを示した。酸化窒素は、炎症誘発性サイトカインIL-1およびTNFαの破壊効果を媒介するGreenetal.2006。これは、減少したコラーゲンおよびプロテオグリカンの産生、軟骨細胞のアポトーシスおよびメタロプロテアーゼの刺激を招くVuolteenahoetal.2005。従来技術に公知された治療方法において、金は、筋肉内にまたは経口投与される。しかし、これらの投与方法および適切な金薬剤を用いることによっては、試験管内研究から公知の所望する効果がある程度のみ達成される。本発明による方法に初めて用いられる、閉鎖系において、金粒子と、ヒトまたは動物の自己由来autologousまたは相同homologousの体液、特にその血液サンプルとの組み合わせは、驚くべきことに、i従来の公知の方法に比べ、明らかにより高い濃度の所望するタンパク質、特に血液の場合は、サイトカイン特にIL-1、IL-6、IL-8、IL-10、G-CSF、MCP-1、MIP-1、RANTES、TNF-α、GRO-α、MCP-3、MIFおよびIL-1RAだけでなく、ii培養時間の間に生理学的タンパク質の老化抑制に起因したより優れた品質の考慮中のタンパク質、およびiiiタンパク質ゲルゾリンgelsolinの顕著な蓄積を提供する。ゲルゾリンは、全ての動物細胞ヒト細胞を含む内に、また細胞外に例えば、血漿内に偏在するアクチン結合タンパク質であり、Ca2依存的アクチンフィラメントを断片化し再重合化することを防止し、また、アクチン-フィラメント結合および分離方法の調節に核心作用を有するか/充足する。ゲルゾリンは、細胞質抽出物から発見し確認され、また、運動性motile細胞におけるその偏在と系統発生的な保存は、細胞内の調節タンパク質として必須的な役割を提示する。その後、ゲルゾリンは、哺乳動物の血漿からも生じ、また、そこでアクチンを解重合depolymerizeするものとして明らかになった。このような、いわゆる血漿ゲルゾリンpGelsolin、pGSは、細胞質ゲルゾリンcGelsolin、cGSのイソ型isoformであり、また、N-末端において付加的な23個のアミノ酸を有するという点で構造的に相違する。血漿ゲルゾリンの生理学的な作用は、依然として数多くの研究作業の主題でもあるDiNubriu、2007およびこれに引用された文献。ゲルゾリンは、細胞運動性、食菌作用、アポトーシスおよび血小板の活性化のような重要な細胞作用を調節するSilaccietal.2004、Trickeyetal.2004。リューマチ性関節炎にかかったヒトの場合、ゲルゾリンの血漿濃度が減少するOsbornetal.2008。組織退行を含む他の疾患の場合および特に敗血症の場合、前記ゲルゾリンの血漿濃度もまた減少するSuhleretal.1997、Osbornetal.2008、Leeetal.2007。従来技術は、血漿ゲルゾリンが体の過度な炎症反応を吸収するための緩衝剤として作用することを示すDiNubile2008。本発明による方法を利用して生産されたタンパク質、特にゲルゾリンおよびサイトカインは、容器内に位置した液体の他の成分と共に直接的な方式により、すなわち、例えば遠心分離、滅菌濾過または他の容器への伝達のような追加の操作を行うことなく、患者に再投与することができるしかし、必ずしもそうではない。その結果、タンパク質溶液の汚染を避け、且つ、タンパク質を投与する間の患者の感染危険を最小化する。本発明による方法の本発明による変形において、前記金粒子は、試験管内で培養した後に体液、例えば血清から除去して廃棄される。この利点は、前記体液、例えば前記血清を投与する間または投与した後、金誘導された悪い効果を完全に避けるものである。本発明による方法の本発明による好ましい変形において、前記金粒子および体細胞例えば、血液細胞およびその他の不溶性凝集物は、試験管内で培養した後に体液例えば、血清から除去して廃棄される。自己由来のヒト体液、および特に製造された前記種類の血清は容認性が卓越し、さらに、悪い影響は予想されない。前記方法に用いられた金粒子は、好ましくは所定構造および/または所定大きさを有する。10nm~500μm範囲の粒子大きさを有する微細粒子および/またはナノ粒子が特に好適である。金粒子が試験管内での培養後に体液、例えば血清から除去して廃棄される本発明による方法の変形において、好ましくは約1μmの大きさの金粒子が、より好ましくは10ml当たり103~104の金粒子量として前記方法に用いられる。前記用途の場合、容量が約10mlである容器例えば、注射器が実際に有用であるとして明らかになった。実際の使用で成功的であるものとして立証された一実施例において、前記金粒子は、1mlの体液当たり0.3mgの量で容器内に存在する。原則的には、1ml当たり0.1~10mgの濃度が好適であると考慮される。容器の内部構造は、好ましくは、ヘパリン、クエン酸塩、EDTAまたはCPDAのような抗凝固剤を有しないが、本発明が基本とする作業の一部として、驚くべきことに、これらの物質の不在下でよりはこれらの物質の存在下で幾つかのタンパク質が生合成されることが明らかになったためである。特に体液である血液および抗凝固剤であるヘパリンの場合、ヘパリンおよびその他の抗凝固剤の不在下でよりは、例えば容器内壁のコーティングとしてヘパリンの存在下で相当に低いサイトカインの産生が得られた。可能な容器は特に注射器であり、これは、培養容器として用いることができるだけでなく、それと同時に体液を得るための収集機構として、および/またはタンパク質を患者に投与するための投与機構として好適であるためである。しかし、他の可能な容器は密封可能なポーチであり、これは、特に比較的に大きい体積である場合、相応する体積の注射器に比べてより柔軟に取り扱いして保存することができ、また、技術的に簡単で信頼性のある方式で注射器にカップリングすることができるためであり、また、前記注射器を介して充填や空にすることができるためである。本発明による方法は、血液細胞からタンパク質を生成生合成し蓄積するのに特に好適である。したがって、特に血液、好ましくは血清が体液として考慮される。驚くべきことに、前記治療有効性タンパク質ゲルゾリンは、本発明による方法を利用して生成され、また、特に効果的に、すなわち相当の量に蓄積される。したがって、本発明による方法は、特にゲルゾリンを得るためのものである。体液で充填された容器に対する培養条件に関しては、20°C~41°C、好ましくは37°Cの温度で、12~72時間、好ましくは24時間の培養時間が良好な結果をもたらすことが実際に明らかになった。上述した目的は、体液から治療有効性タンパク質を試験管内で生合成し蓄積試験管内誘導するための容器を提供することによって達成され、これは、容器が金粒子を含有し、また体液サンプルを収集し、保存し、再分配するのに好適であるという事実と、内容物が中空hollow針カニューレ、注射針によって注射されるように中空針カニューレ、注射針とカップリング可能であるという事実を特徴とする。前記容器を利用し、上述したタンパク質の製造方法を実施することができ、また、それと関連する利点を利用することができる。前記製造されたタンパク質は、カップリング可能な中空針によって所望する投与部位に直接投与、特にヒトまたは動物の体内に導入することができる。前記金粒子は、好ましくは所定構造および/または所定大きさを有する。微細粒子および/またはナノ粒子10nm~500μmの粒子大きさが特に好適である。容器中の金粒子の適切な量は、1mlの体液当たり0.1mg~10mg、好ましくは1mlの体液当たり0.3mgである。前記容器は、好ましくは注射器またはポーチである。注射器の利点は、培養容器として用いられるだけでなく、それと同時に体液を得るための収集機構および/またはタンパク質を患者に投与するための投与機構として用いられるということである。ポーチの利点は、比較的に大きい体積である場合、相応する体積の注射器に比べ、より柔軟に取り扱いして保存することができ、また、充填や空にするために注射器にカップリングできるということである。特に好適な容器は、内部の空洞に特定デザインを有しない市販の注射器例えば、5~100ml注射器である。前記金粒子例えば、Bio-RadLaboratoriesから入手したGoldMicrocarriers、カタログ165-2264は、注射器のシリンダーに導入される。注射器、特に注射器シリンダーの内壁およびシリンダー内にある注射器プランジャーplungerの一部は、好ましくはプラスチック、例えばポリスチレン、ポリエチレン、ポリビニルクロライド、ポリプロピレン中性S-Monovettes、Sarstedtまたは類似する物質またはその混合物からなる。前記容器は、血液細胞からタンパク質、特にゲルゾリンを製造生合成し、また蓄積するのに特に好適である。したがって、特に血液、好ましくは血清が体液として考慮される。本発明による方法を利用して体液から生成されたタンパク質は、前記体液および金粒子と共にまたは金粒子なしで疾病治療のための薬物として用いられる。本発明による方法を利用して製造された前記タンパク質-濃縮されたprotein-enriched、および特にサイトカイン-濃縮されたおよびゲルゾリン-濃縮された体液、特に血清はより安全であり、低価で迅速に製造することができ、また、悪い影響が特に少ないため、通常の相応する薬物製剤に対する代案を提示する。したがって、本発明は、体液、特に血清と金粒子の混合物を培養例えば、20°C~41°C、好ましくは37°Cの温度で、12~72時間、好ましくは24時間することにより、その次、金粒子および好ましくはすなわち、場合に応じて付加的に血液細胞およびその他の不溶性成分を体液、特に血清から除去して廃棄好ましくは、遠心分離および/または滅菌濾過によりすることにより、金粒子、好ましくは約1μmの大きさであり、また、好ましくは10ml容器当たり103~104の金粒子または1mlの血液/容器当たり1μmの直径を有する金粒子0.3mg量として金粒子を含有する容器に収集される体液、特に血清によって得ることができる、薬物として用いるためのまたは薬物を製造するためのタンパク質-濃縮された体液、特にサイトカイン-濃縮されたおよびゲルゾリン-濃縮された血清を提供する。本発明は、自己由来または相同血液および金粒子の薬物として、または薬物製造のための用途を提供する。すなわち、本発明は、薬物として用いるための自己由来または相同血液および金粒子からなる物質混合物、または活性成分の組み合わせとして蓄積されたタンパク質をはじめとする自己由来または相同血液および金粒子からなる物質混合物を含む薬物を提供する。本発明による薬物は、簡単であり、安価であり、危険が少なく、さらに効果的な治療を許容する。記載された薬物は、退行性関節疾患、特に関節症および腱損傷腱炎の治療に特に好適である。特に金粒子と培養されてから粒子を除去した薬物は、関節症および組織退行および/またはゲルゾリンの欠乏と関連する他の疾病を治療するのに非常に好適なものとして考慮される。本発明による薬物の一特定実施例は、培養後、ゲルゾリンに対する関連標準血液レベルの少なくとも2倍であるゲルゾリン含量を有する、金粒子と培養された体液特に、血液であることを特徴とする。本内容において、用語ゲルゾリンに対する関連標準血液レベルは、薬物によって処理される患者グループの血液におけるゲルゾリンに対する医療的または獣医科的な標準値を意味する。前記患者グループは、動物学的な種、および人種、性別および年齢の面を特徴とする。このようなゲルゾリン-豊かな薬物は、患者の血液におけるゲルゾリンの欠乏と関連する疾病、例えば敗血症または中風Strokeの治療用として考慮される。培養された血液-金混合物は、全体的にまたは部分的に投与される。必要な場合、例えば、血液から細胞および細胞断片を除去するために、また、それと同時に注射体積を減少させるために、動物またはヒト患者に投与する前に遠心分離および/または滅菌濾過の処理を行うことができる。本発明は、以下で例示的な実施例および関連図面を用いてより詳しく説明する。実施例1:本発明による方法による血液サンプル、また、本発明による容器における、タンパク質の生産をMID-FTIR分光測定法および複合分析によって確認11人の相異なる患者番号1-11の各々から2個の9ml血液サンプルを本発明による容器、すなわち2.7mgの金粒子1μmの直径を有するで予め充填された9ml注射器に収集した。同一供給源患者から同量の血液サンプルを、いかなる金粒子も含有しない類似する9ml注射器内に収集した。前記サンプルは、相異なる時期に、すなわち血液を取った直後の時間T0、および37°Cで24時間培養した後の時間T24において分析した。前記サンプルは、中赤外線範囲スペクトル範囲4000cm-1~400cm-1でフーリエ変換赤外分光測定器、すなわちMID-FTIR分光測定器例えば、Micro-BiolyticsGmbH/EsslingenからのAquaSpec方法によって分析した。フーリエ変換赤外分光測定器をサポートする測定原理は、物質に電磁波を照射して特定の周波数範囲が吸収されることを基礎とする。赤外線放射線は、エネルギー的に分子結合の振動レベル範囲にあるため、吸収は結合の振動刺激を招く。これは、測定されたスペクトルにおいて屈折の形態として見ることができるダイアグラム。したがって、必要なエネルギーまたは振動数は特定結合の特徴であるため、物質を確認し、構造を明確にすることができる。FTIR分光測定は、生物学的巨大分子において、構造的、反応-誘導された変形の分析に特に好適である。この方法を利用し、生物学的系、特にタンパク質-含有水性液体を調査することができる。前記サンプルは変形するか破壊されることもなく、また生体分子の天然条件下で作業が実施され、すなわちサンプルの固定も相異なる種類のサンプル製造も必要でないため、実際状態を測定することができる。タンパク質の全ての分子構成成分は赤外分光範囲で吸収バンドを有するため、タンパク質のほぼ全ての領域が観察され、またタンパク質の構造に対する詳細な情報も得ることができる。MID-FTIR分光測定方法は、タンパク質の構造およびタンパク質の濃度の測定において、自動化し、再現可能な変化の確認定量を許容する。非常に低いタンパク質濃度0.1mg/ml未満および非常に少ない構造の変化も検出することができる。本発明の内容による方法を実施する時、金粒子を有するかまたは有しない血液サンプルは、分光学的測定セル透過セル内の実際状態で分析しており、これは、非常に精密であり、生体に適合し、且つ、水性サンプルに適合であった。内部検量を利用し、溶解したタンパク質の濃度およびその二次構造αヘリックス、βシートは、各々の測定されたサンプルに対して自動に決定した。前記測定の結果は図1にグラフで示す。本発明により、金粒子の存在下で培養されたサンプルの生物学的挙動は、対照群サンプルの生物学的挙動と相異なることを示す。時間T0において全てのサンプルの測定された値は青色で示し、上部-左側の象限quadrantにおいて優勢である。24時間の培養時間で本発明による方法を実施した後に測定された値は緑色で示し、下部-左側の象限内またはその近くにおいて優勢である。これは、血液を培養する間、生理学的タンパク質の老化ageingが金の付加によって抑制されることを示す。24時間培養した後の対照群サンプルの測定された値は赤色で示し、上部-右側の象限において優勢である。このような右側への移動はタンパク質構造の老化を示す。際立ってコード化した微細粒子例えば、ミュンヘンに所在するBio-RadLaboratoriesから入手可能なBioPlexTTM200システムを基本にした多変数分析法同意語:複合分析を利用し、本発明による方法と関連するサンプル本発明、WO9909051号による方法と関連するサンプルStdT、およびいかなる処理もしない相応する対照群をもって、下記タンパク質を時間T0およびT24において定量測定した。ゲルゾリンGS、インターロイキン-4IL-4、インターロイキン-10IL-10、インターロイキン-13IL-13、インターロイキン-1受容体拮抗剤IL-1Ra、インターロイキン-1βIL-1β、腫瘍壊死因子αTNF-a、顆粒球-コロニー刺激因子G-CSF、顆粒球-マクロファージコロニー刺激因子GM-CSF、インターフェロンγIFN-g、造血幹細胞成長因子SCGF-β、マクロファージ炎症性タンパク質-1aMIP-1a、マクロファージ炎症性タンパク質-1βMIP-1β、血管内皮成長因子VEGF、インターロイキン-18IL-18、マクロファージ走化性タンパク質MCP-3、基質stromal由来因子SDF-a、線維芽細胞成長因子塩基性FGF、成長-調節された発癌遺伝子αGROa。これらのタンパク質は、組織退行および組織リペアーに重要な役割をする。前記分析結果を表1に示し、また、図2にグラフで示す。これらは、本発明によって処理されたサンプル本発明の場合は、24時間後にゲルゾリン濃度に相当な増加10因子が発生した反面、対照サンプルの場合は対照群T24およびStdTT24、ゲルゾリンの蓄積よりはゲルゾリンの消失が発見されることを示す。腫瘍壊死因子αTNF-a、マクロファージ走化性タンパク質MCP-3、および成長-調節された発癌遺伝子αGROaの濃度は、対照群サンプル対照群T24およびStdTT24よりは、本発明によって処理されたサンプル本発明の方が、実質的にTNF-a:30-40因子;MCP-3:20-30因子または少なくとも明らかにGROa:2因子より高かった。実施例2:動物における薬物効能の研究A軟質-組織の膨潤有望な臨床研究の一部として、腱炎骨に対する付着領域において腱tendonに対する退行性変化による顕著な軟質組織の膨潤を有する8匹の馬を本発明による薬物で処理した。前記薬物を製造するために、金粒子-含有注射器形態の本発明による容器に関心動物から得た血液を充填し、37°C領域の温度で24時間培養した。培養期間の末期に、薬物は、前記期間の間に合成し蓄積されたタンパク質、特にサイトカインおよびゲルゾリン、および金粒子を含有する、注射器に位置した血液の形態で完成され、また直接に、また直ちに使われることができる。前記薬物は、注射器内で製造されたため、移さず、よって汚染および物質の損失なしで注射によって動物に投与される。現在の研究のために、各馬に対し、時間T0において4種の薬物-服用量を製造し、すなわち4個の金粒子-含有注射器に考慮中の動物から得た血液を充填し、37°C領域の温度で24時間培養した。これらの薬物注射剤を各場合において1週の間隔をおいて各馬に投与した。最初の投与は時間T24において実施し、また、第2回目、第3回目および第4回目の投与は、1週後、2週後、および3週後に実施した。第2回目、第3回目および第4回目の投与のための薬物-含有注射器は、使う時まで-20°Cに保存した。膨潤状態は、1週後、2週後、3週後、3ケ月後、6ケ月後および1年後に確認し、0~5基準を利用して評価した0=全く膨潤されず、5=深刻な膨潤。全ての8個の場合において、3週後ぶりに顕著な膨潤の減少が発見された。6ケ月後および1年後にも、全ての馬は膨潤から完全に自由であった。治療する間にいかなる悪い効果も明らかになっていない。この研究の結果は図3にグラフで示す。B跛行Lameness他の馬研究において、跛行するという臨床症状12個の肢が影響を受けるを示す11匹の馬を本発明による薬物で治療した。跛行する症例の医療的な原因は、6個の症例では関節内/関節上での退行性軟骨変化n=6であり、また、6個の症例では軟質-組織疾患n=6であった。薬物を製造するために、各馬の場合、金粒子-含有注射器形態の本発明による4個の容器に考慮中の動物から得た血液を充填し、また37°C領域の温度で24時間培養した。培養期間の末期に、薬物は、前記期間の間に合成し蓄積されたタンパク質、特にサイトカインおよびゲルゾリン、および金粒子を含有する、注射器に位置した血液の形態で完成された。注射体積を最小化するために、5000rpmで10分間遠心分離により、後に続く遠心分離方法によって血球分画を除去した。各上清のみを注射に用いた。これらの薬物注射剤を各場合において1週の間隔をおいて各馬に投与した。最初の投与は時間T24において実施し、また、第2回目、第3回目および第4回目の投与は、1週後、2週後および3週後に実施した。第2回目、第3回目および第4回目の投与のための薬物-含有注射器は、使う時まで-20°Cに保存した。跛行は、1週後、2週後、3週後、3ケ月後、6ケ月後および1年後に確認し、また、跛行の程度はAAEEAmericanAssociationofEquinePractionersに従い、0-4基準0=全く跛行せず、5=深刻な跛行を利用して評価した。全ての12個の場合において、3週後ぶりに顕著な跛行の減少が発見された。6ケ月後および1年後にも、全ての馬は症状から完全に自由であり、特に跛行から自由であった。治療する間にいかなる悪い効果も明らかになっていない。この研究の結果は図4にグラフで示す。実施例3:金粒子を含有する本発明による容器の製造用いられた金粒子は金粉末であった粒子大きさ1μm、ミュンヘンに所在するBio-RadLaboratories。前記金粒子は、製造者によって推薦されたように先に滅菌される。所望する量の金粒子/金粉末、例えば30mgを1mlの70エタノールと共に混合し、軽く攪拌混合器、vortexerしながら10分間培養し、1分間沈降させてから遠心分離した後に上清を除去した。その次、前記金粒子は、各場合において、1mlの滅菌二重-蒸留した水を用いて3回洗浄した。最終遠心分離によって最後の洗浄過程と上清を抽出した後、前記金粒子を滅菌PBSに再懸濁し、また、所望する濃度、例えば60mg/mlに調節した。連続的な攪拌下で、ピペットを利用して10μlの金粒子溶液を除去し、また、SarstedtREF02.1726.001から得たS-Monovette-中性/9ml92x16mmに移した。前記Monovetteは、先ず滅菌作業台スクリューキャップにおいて開き、10μl金-粒子溶液を注射器の内壁に加えた後に再び閉じた。充填されたMonovetteは、使う時まで室温に保存した。本発明による方法を実施する時に使うために、9mlの体液例えば、血液を前記製造されたMonovetteに充填し、金-粒子/PBS溶液と混合した。実施例4:ヒトにおける薬物効率の研究有望な経時的研究の一部として、放射能的に検出された膝関節症にかかった総9人の患者または13個の関節を登録医師が治療を行った。関節症の程度は、チェルグレン-ローレンス基準に従って等級3-4に評価されたKellgrenJ.H.andLawrenceJ.S.:RadiologicalAssessmentofOsteo-Arthrosis、Ann.rheum.Dis.1957、16、494-501。全ての患者は、先ず金で処理されてから粒子を除去し、本発明による自己血清によって関節腔内注射を各々1週間隔で4回投与を受けた。関節腔内の流出があれば、注射前に各場合において排水され、排水された量を収録し、また、その後の加工のために-20°Cで1ml分量aliquotで冷凍させた。この治療の臨床結果は、処理前および許可された点数評価システム同意語:スコアKOOSを利用し、治療してから1、3、6および12ケ月後に記録したRoosE.M.,RoosH.P.,LohmanderL.S.,Ekdahlc.,BeynnonB.D.:KneeInjuryandOsteoarthritisOutcomeScoreKOOS-developmentofaself-administeredoutcomemeasure、J.Orthop.SportsPhys.Ther.1998、28:88-96。最大に得ることができる点数は100であった。点数が高いほど、達成した結果がより優れるものであった。結果を図5にグラフで示す。変数症状およびスポーツ活動度と関連するKOOS点数の評価は、3ケ月および6ケ月後に臨床症状において著しい向上を示した参照:図5。1人患者の場合において、初めには相当な流出があった。前記流出は、注射治療前に各場合において排出されており、流出量を収録し、また、ゲルゾリン濃度に対して滑液吸引物synovialaspirateを試験した。ゲルゾリン濃度は流出による希釈の程度によって異なるため、ゲルゾリン濃度は尿素濃度を基本にしたKrausetal.:UreaasaPassiveTransportMarkerforArthritisBiomarkerStudies、ARTHRITISRHEUMATISMVol.46、No.2、February2002、pp.420-427。その結果は図6にグラフで示す。本発明により製造された血清、すなわち金粒子と共に培養した後、全ての粒子が除去された血清を関節腔内に投与することにより、関節腔内のゲルゾリンの濃度を明らかに増加させることができた参照:図6。それと同時に、流出量に減少があり参照:図6、また、臨床症状ににおいて明らかな向上があった。この研究は、関節症の治療、および一般的にゲルゾリン欠乏症と関連する疾病の治療に対する証拠を提供する。実施例5:試験管内の軟骨衝撃モデルにおいて本発明による軟骨保護効果の表示関節症が発病する間に関節軟骨に対する機械的過負荷の影響は十分に知られている。軟骨移植物に対する機械的荷重の影響を試験する試験管内モデル、例えば、ヒューザーおよびデービスからのモデルHuserC.A.andDaviesM.E.:Validationofaninvitrosingle-impactloadmodeloftheinitiationofosteroarthritis-likechangesinarticularcartilage、JOrthopRes.,Apr2006;244:725-732がよく確立し立証されている。このようなモデルにおいて、軟骨退行の開始に対する良好な指標は、試験された軟骨-骨サンプルの培養培地におけるプロテオグリカン含量の測定である。本発明を招いた調査を進行する間、6匹の動物を含むミニ豚Goettingerminipigに対する動物-実験研究において、103金粒子をそれぞれ含有した9ml注射器を利用し、動物当たり各場合において4個の血液サンプル9mlを収集し、また、本発明による方法に従って37°Cで24時間培養した。培養期間後、前記血液サンプルを注射器のシリンダーにおいて遠心分離し、また、各注射器または、注射器のシリンダーの場合、上清は滅菌フィルタを介して新しい/新規の金粒子を有しない注射器のシリンダーに移した。血液サンプルの収集と並行して、軟骨サンプルも各大腿骨頭から無菌条件下で考慮中の動物から収集し、また、8x8x10mm長さ/幅/高さブロックに切断した。前記軟骨は、全ての移植物の場合において肉眼で完全であった。衝撃試験に用いる前に、前記軟骨サンプルは、10ヒト血清HS、100U/mlペニシリン、100U/mlゲンタマイシンおよび1.25U/mlアムホテリシンBが補充されたDMEM培地に維持させた。サンプルを収集する日に、衝撃試験を実施した。このために、軟骨-骨サンプルブロック/移植物を、各場合において、ポリメチルメタクリレートからなるシリンダードロップタワーdroptower内に滅菌条件下で収集し、衝撃プランジャーplungerの下に距離をおき、33cm高さおよび4cm軸で測定された。前記衝撃プランジャーは、高さ5cmおよび直径3.94cmの大きさのシリンダー形態であり、その重量は493gであった。前記衝撃プランジャーは、糸を介して高さ7g、高さ/厚さ1cmおよび直径0.6cmを有する実際の衝撃器ディスク衝撃器単位に連結された。サンプルに対する高さが15cmである衝撃器ディスク衝撃器を含有する衝撃プランジャーの自由落下により、ドロップタワー内にある軟骨-骨サンプルブロック当たり1回の衝撃を加えた。衝撃は、28.3mm2の軟骨の表面積上に0.736Jであった。軟骨-骨サンプルブロック/移植物は次の3つのグループに分けられた。●衝撃処理を受けない移植物=衝撃が加えられない対照群=0対照群●衝撃処理を受けた移植物=衝撃が加えられた対照群=衝撃対照群●衝撃処理された後、本発明により製造されたタンパク質-濃縮された血清と共に培養された移植物。衝撃処理に続き、前記処理された骨-軟骨製剤および0対照群をPBSによって3回洗浄し、12-ウェル培養板に伝達した。各移植物に3mlの各処理培地を提供し、標準化した条件37°C、5CO2下で、培養器で培養した。培養培地は72時間ごとに交換した。本発明により製造されたタンパク質-濃縮された血清は、移植物の場合、0日および7日に考慮中の移植物グループに付加した。2日、7日および14日に、培養培地中のプロテオグリカンの含量を全試片に対して測定した。このために、バイオカラーリミテッド英国のキャリックファーガスに所在から入手したBlyscanGlycosaminoglycanAssayを使った。その結果を図7にグラフで示す。プロテオグリカンの含量は、平均グリコサミノグリカンGAG濃度μg/培地mlに特定される。プロテオグリカンの放出分析は、全ての3つのグループにおいて、すなわち0対照群および2つの衝撃処理された/衝撃が加えられた移植物軟骨-骨製剤において、プロテオグリカン量が時間経過に伴って増加することを示す。しかし、本発明により製造されたタンパク質-濃縮された血清によって処理された移植物/軟骨-骨製剤の場合は、そのような増加は、衝撃処理を受けない対照群0対照群の場合より若干強い程度である反面、相応する血清処理を受けない衝撃-処理された/衝撃処理された移植物軟骨-骨製剤は非常に高い増加を示した。したがって、この試験は、本発明による薬物の軟骨保護効果に対する証拠を提供する。"