"トマトのスクロース合成酵素遺伝子SSのプロモーター含有核酸TOMSSFまたはその改変体のうち必要領域である配列番号1のヌクレオチド1位~1676位を含む、キク科植物において雄ずい特異的に遺伝子発現をさせるための組成物。前記TOMSSFは配列番号1に記載の配列またはその改変体を含む、請求項1に記載の組成物。前記組成物は、雄性不稔化のためのものである請求項1に記載の組成物。前記キク科植物は、キクChrysanthemum×morifoliumである請求項1に記載の組成物。前記特異的な遺伝子発現は、雄ずいに対する発現が、他の組織に対する発現の少なくとも約100倍である、請求項1に記載の組成物。トマトのスクロース合成酵素遺伝子SSのプロモーター含有核酸TOMSSFまたはその改変体のうち必要領域である配列番号1のヌクレオチド1位~1676位を含むベクター。発現させるべき目的遺伝子をコードする核酸配列をさらに含む請求項6に記載のベクター。キク科植物において雄ずい特異的に遺伝子発現をさせるための請求項6に記載のベクター。前記TOMSSFは配列番号1に記載の配列またはその改変体を含む、請求項6に記載のベクター。前記ベクターは、雄性不稔化のためのものである請求項6に記載のベクター。前記キク科植物は、キクChrysanthemum×morifoliumである請求項8に記載のベクター。前記特異的な遺伝子発現は、雄ずいに対する発現が、他の組織に対する発現の少なくとも約100倍である、請求項6に記載のベクター。トマトのスクロース合成酵素遺伝子SSのプロモーター含有核酸TOMSSFを含む組換え細胞。トマトのスクロース合成酵素遺伝子SSのプロモーター含有核酸TOMSSFを含むアグロバクテリウム。トマトのスクロース合成酵素遺伝子SSのプロモーター含有核酸TOMSSFを含む組換え組織。トマトのスクロース合成酵素遺伝子SSのプロモーター含有核酸TOMSSFを含む組換え植物。本発明者らは、トマトショ糖合成酵素遺伝子のプロモーターに、キク科植物の雄ずい発現特異性を見出したことによって、本発明を完成させた。本発明者らは、トマトのショ糖スクロース合成酵素遺伝子SSの5’非翻訳領域とイントロンを含む領域約3.4kbpの配列トマトのショ糖スクロース合成酵素遺伝子SSのプロモーター含有核酸;TOMSSFを単離した。TOMSSFの下流にβ-グルクロニダーゼglucuronidaseGUS遺伝子を結合し、バイナリーベクターにクローニングした。このベクターをアグロバクテリウムに遺伝子導入し、キクに感染させることにより形質転換体を作出した。形質転換体11系統中3系統で雄ずいでのGUS遺伝子発現を確認した。トマトではすでにTOMSSFを用いた組換え体に関する論文非特許文献4-5が発表されている。しかし、当該論文における形質転換トマトの解析では、TOMSSFの雄ずいにおいて雄性不稔性を達成しうる程度の発現は認められていない。一方、キクには倍数性があり、導入遺伝子のサイレンシングが起きやすいが、TOMSSFは発現量が高く、組織特異性も高いため、雄ずい特異的プロモーターとして有用である。そこで、本発明は、以下を提供する。1トマトのスクロース合成酵素遺伝子SSのプロモーター含有核酸TOMSSFまたはその改変体のうち必要領域である配列番号1のヌクレオチド1位~1676位を含む、キク科植物において雄ずい特異的に遺伝子発現をさせるための組成物。2前記TOMSSFは配列番号1に記載の配列またはその改変体を含む、項目1に記載の組成物。3前記組成物は、雄性不稔化のためのものである項目1または2に記載の組成物。4前記キク科植物は、キクChrysanthemum×morifoliumである項目1~3のいずれかに記載の組成物。5前記特異的な遺伝子発現は、雄ずいに対する発現が、他の組織に対する発現の少なくとも約100倍である、項目1~4のいずれかに記載の組成物。6トマトのスクロース合成酵素遺伝子SSのプロモーター含有核酸TOMSSFまたはその改変体のうち必要領域である配列番号1のヌクレオチド1位~1676位を含むベクター。7発現させるべき目的遺伝子をコードする核酸配列をさらに含む項目6に記載のベクター。8キク科植物において雄ずい特異的に遺伝子発現をさせるための項目6または7に記載のベクター。9前記TOMSSFは配列番号1に記載の配列またはその改変体を含む、項目6~8のいずれかに記載のベクター。10前記ベクターは、雄性不稔化のためのものである項目6~9のいずれかに記載のベクター。11前記キク科植物は、キクChrysanthemum×morifoliumである項目8~10のいずれかに記載のベクター。12前記特異的な遺伝子発現は、雄ずいに対する発現が、他の組織に対する発現の少なくとも約100倍である、項目6~11のいずれかに記載のベクター。13トマトのスクロース合成酵素遺伝子SSのプロモーター含有核酸TOMSSFを含む組換え細胞。14トマトのスクロース合成酵素遺伝子SSのプロモーター含有核酸TOMSSFを含むアグロバクテリウム。15トマトのスクロース合成酵素遺伝子SSのプロモーター含有核酸TOMSSFを含む組換え組織。16トマトのスクロース合成酵素遺伝子SSのプロモーター含有核酸TOMSSFを含む組換え植物。上記特許文献1および2、非特許文献1~5では、トマトショ糖合成酵素遺伝子のプロモーターのキク科植物の雄ずいにおける特異的な発現についてはなんら知見がなく、トマトショ糖合成酵素遺伝子のプロモーターのキク等のキク科植物の雄ずい発現制御に関する知見は予測できない。上述のように、先行技術では、非特許文献1、4および5に、トマトショ糖合成酵素遺伝子のプロモーターが記載されているが、キク等のキク科植物での発現パターンは記載されていない。非特許文献1は、このプロモーターが果実や種子で特異的に発現することを記載しているが、トマトの果実は子房由来で子房は雌ずいに含まれるところ、キクでは雌ずいでは発現がほとんど見られず、雄ずいのみ発現が高くなっている。果実と雄ずいでは形態学的にもかなり異なる器官と考えられることから、非特許文献1を参酌しても、キク等のキク科植物での雄ずい特異的発現に関する特徴は合理的に導き出すことができず、少なくとも実際に雄ずいでの発現を実現することは予想外であるといえる。非特許文献2および3は、他のショ糖合成酵素遺伝子のプロモーターに関する記載をしているが、雄ずい特異性に関する記載はない。特許文献1および2には、組織特異的プロモーターを用いた雄性不稔に関する記載があるが、雄ずい特異性のプロモーターを使用することは記載されておらず、ましてやトマト由来のプロモーターに関する記載もない。したがって、この点においても、本発明は、従来技術からキク等のキク科植物での雄ずい特異的発現に関する特徴は合理的に導き出すことができず、少なくとも実際に雄ずいでの発現を実現することは予想外であるといえる。キク等のキク科植物において雄ずい特異的な発現を誘導するプロモーターが提供された。したがって、特に、植物バイオ分野において、遺伝子組換えキクを生産販売する際に雄性不稔化が必要な場合において、初めてそのようなことを可能にするという効果を奏する。また、キクでは難しかったた新しい花型を作出できるツールを提供する。また、これまでキク等のキク科植物での雄ずい特異的プロモーターは無く、他方で、キク科植物に限らず植物において遺伝子組換え植物を生産販売する場合、雄性不稔化技術が要請されるところ、本発明は、雄ずい発現を実現するプロモーターを提供することによりそのような手段を初めて提供することができたという効果も奏する。以下、本発明を説明する。本明細書の全体にわたり、単数形の表現は、特に言及しない限り、その複数形の概念をも含むことが理解されるべきである。従って、単数形の冠詞例えば、英語の場合はa、an、theなどは、特に言及しない限り、その複数形の概念をも含むことが理解されるべきである。また、本明細書において使用される用語は、特に言及しない限り、当上記分野で通常用いられる意味で用いられることが理解されるべきである。したがって、他に定義されない限り、本明細書中で使用されるすべての専門用語および科学技術用語は、本発明の属する分野の当業者によって一般的に理解されるのと同じ意味を有する。矛盾する場合、本明細書定義を含めてが優先する。用語の定義本明細書において、必要に応じて、以下の略語を用いる。GUS:β-グルクロニダーゼSS:スクロースショ糖合成酵素遺伝子TOMSSF:トマト果実スクロースショ糖合成酵素のプロモーター含有配列以下に本明細書において用いられる各用語の意味を説明する。各用語は本明細書中、統一した意味で使用し、単独で用いられる場合も、または他の用語と組み合わされて用いられる場合も、同一の意味で用いられる。本明細書において雄ずい雄蕊という用語は、当該分野において通常用いられる意味と同義で用いられ、雄性配偶子を産生しかつ葯および花糸を含む花の器官を意味する。本明細書において、トマトのスクロースショ糖合成酵素遺伝子SSのプロモーター含有核酸TOMSSFとは、トマトのスクロースショ糖合成酵素遺伝子SSの5’非翻訳領域およびイントロンを含む領域約3.4kbpの配列を含む配列であって、プロモーター配列を含む配列であり、配列番号1またはその改変体に代表され、トマトのスクロース合成酵素遺伝子SSの5’非翻訳領域とイントロンを含む領域をいう。DDBJ/GenBank/EMBLaccessionnumberAB455486またはL19762。TOMSSFの改変体としては、キク科植物あるいはキクの類縁植物において、雄ずい発現制御効果を有する限り当該分野において知られる任意の改変置換、付加、欠失等を行なうことができることが理解される。本明細書において5’非翻訳領域とは、当該分野において通常用いられる意味と同義で用いられ、構造遺伝子の5’上流の領域をいう。トマトのスクロース合成酵素遺伝子SSの5’非翻訳領域は、配列番号1のヌクレオチド1位~3404位全長のヌクレオチド1677位~ヌクレオチド1775位およびヌクレオチド3364位~ヌクレオチド3404位に該当する。このなかで、本発明において最低限必要と考えられる領域は、配列番号1のヌクレオチド1位~ヌクレオチド1676位であると考えられるが、それに限定されず、当業者は、本明細書の開示に基づいてそのような最低限必要な領域を決定することができる。好ましくは、配列番号1に記載の配列またはその改変体が使用される。本明細書においてイントロンとは、当該分野において通常用いられる意味と同義で用いられ、遺伝子DNA内に存在する塩基配列のうち、mRNAに含まれない配列をいう。トマトのスクロース合成酵素遺伝子SSのイントロンは、配列番号1全長のヌクレオチド1677位~ヌクレオチド3363位に該当する。このなかで、本発明において最低限必要と考えられる領域は、配列番号1全長のヌクレオチド1位~ヌクレオチド1676位であると考えられるが、それに限定されず、当業者は、本明細書の開示に基づいてそのような最低限必要な領域を決定することができる。本明細書において本発明において使用されるプロモーターはまた、トマトのスクロースショ糖合成酵素遺伝子SSのプロモーター含有核酸TOMSSFに基づき、TOMSSFの5’上流ゲノム領域あるいは配列を単離することによって取得できる。本発明において使用されるプロモーター領域を単離する方法としては、特に限定されないが、例えば、インバースPCR、ゲノムDNAライブラリーから単離する方法等を例示することができる。本発明において使用されるプロモーター領域を単離するためにインバースPCRを用いる場合は、トマトのスクロースショ糖合成酵素遺伝子SSの塩基配列情報に基づいて一対のプライマーを合成し、これら一対のプライマーと所定の制限酵素で処理した後にセルフライゲーションさせたゲノムDNA断片とを用いてPCRを行うことによって、トマトのスクロースショ糖合成酵素遺伝子SSの上流領域を増幅することができる。その後、トマトのスクロースショ糖合成酵素遺伝子SSの上流領域をクローニングし塩基配列を決定することによって、トマトのスクロースショ糖合成酵素遺伝子SSのプロモーター領域の単離、及び塩基配列配列番号1の決定を行うことができる。また、本発明において使用されるプロモーター領域を単離するためにゲノムDNAライブラリーから単離する場合には、トマトのスクロースショ糖合成酵素遺伝子SSを含むcDNAをプローブとして、定法に従って調製したゲノムDNAライブラリーからトマトのスクロースショ糖合成酵素遺伝子SSを含むゲノムDNAをスクリーニングする。その後、スクリーニングしたゲノムDNAの塩基配列を決定することによってトマトのスクロースショ糖合成酵素遺伝子SSの上流領域に存在するプロモーター領域を特定することができ、さらに、該プロモーター領域のみをPCR等によって増幅してクローニングすることによって単離することができる。いったん本発明のプロモーターの塩基配列が確定されると、その後は化学合成によって、あるいはその塩基配列の一部からなるDNAをプライマーとして合成し、トマトの全DNAを鋳型として用いて、そのプライマーを用いるPCRによって容易に得ることができる。さらに、単離したプロモーター領域配列番号1等の一部を用いてプロモーター活性を測定することによって、単離したプロモーター領域配列番号1等において、プロモーター活性に寄与している領域を特定することができる。プロモーター領域の一部は、該プロモーター領域の一部をPCRによって増幅する方法、プロモーター領域を所定の制限酵素で処理して断片化する方法等を適宜使用して得ることができる。得られたプロモーター領域の一部は、発現量を定量できる遺伝子の上流に組み込み、該遺伝子の発現量を定量することによってプロモーター活性を測定することができる。すなわち、得られたプロモーター領域の一部及び所定の遺伝子を組み込んでなる組換えベクターを構築し、その組換えベクターを用いて形質転換した細胞における該遺伝子の発現量を定量することによって、得られたプロモーター領域の一部におけるプロモーター活性を測定することができる。本明細書において特異的とは、プロモーターについていうとき、ある器官例えば、種子植物の雄性生殖器官である雄ずい雄蕊において、同じ植物体の他の組織または器官の少なくとも1種におけるよりも目的遺伝子を優先的かつ高度に発現させる活性をいう。1例としては、他の器官より多く遺伝子を発現させる能力をいう。好ましくは、雄ずいにのみ遺伝子を検出可能に発現させる能力を含むが、目的に応じて適宜その特異性の程度を選択することができる。本明細書においてヌクレオチドは、一般に認知された1文字コードにより言及され得る。アミノ酸も同様に、その一般に公知の3文字記号か、またはIUPAC-IUBBiochemicalNomenclatureCommissionにより推奨される1文字記号のいずれかにより、本明細書中で言及され得る。本明細書では、アミノ酸配列および塩基配列の類似性、同一性および相同性の比較は、配列分析用ツールであるBLASTを用いてデフォルトパラメータを用いて算出される。同一性の検索は例えば、NCBIのBLAST2.2.92004.5.12発行を用いて行うことができる。本明細書における同一性の値は通常は上記BLASTを用い、デフォルトの条件でアラインした際の値をいう。ただし、パラメーターの変更により、より高い値が出る場合は、最も高い値を同一性の値とする。複数の領域で同一性が評価される場合はそのうちの最も高い値を同一性の値とする。本明細書において、対応する核酸配列例えば、遺伝子とは、ある種において、比較の基準となる種における所定の核酸配列と同様の作用を有するか、または有することが予測される核酸配列をいい、そのような作用を有する核酸配列が複数存在する場合、進化学的に同じ起源を有するものをいう。従って、ある核酸配列例えば、プロモーターに対応する核酸配列は、その遺伝子のオルソログであり得る。したがって、トマトの核酸配列に対応する核酸配列であって、同様の特異性を有するものは、他の植物においても見出すことができ、TOMSSFプロモーターの改変体の範囲に入ることが理解される。そのような対応する遺伝子は、当該分野において周知の技術を用いて同定することができる。したがって、例えば、ある動物における対応する核酸配列は、対応する核酸配列の基準となる核酸配列の配列をクエリ配列として用いてその植物の配列データベースを検索することによって見出すことができる。本明細書において、対応するアミノ酸とは、あるタンパク質分子またはポリペプチド分子において、比較の基準となるタンパク質またはポリペプチドにおける所定のアミノ酸と同様の作用を有するか、または有することが予測されるアミノ酸をいう。本明細書中で使用される異種とは、異なる配列または対応しない配列、あるいは異なる種由来の配列である、ヌクレオチド配列またはアミノ酸配列をいう。例えば、キク科植物のヌクレオチド配列またはアミノ酸配列は、トマトのヌクレオチド配列またはアミノ酸配列に対して異種である。本明細書においてフラグメントとは、全長のポリペプチドまたはポリヌクレオチド長さがnに対して、1~n-1までの配列長さを有するポリペプチドまたはポリヌクレオチドをいう。フラグメントの長さは、その目的に応じて、適宜変更することができ、例えば、その長さの下限としては、ポリペプチドの場合、3、4、5、6、7、8、9、10、15、20、25、30、40、50およびそれ以上のアミノ酸が挙げられ、ここの具体的に列挙していない整数で表される長さ例えば、11などもまた、下限として適切であり得る。また、ポリヌクレオチドの場合、5、6、7、8、9、10、15、20、25、30、40、50、75、100およびそれ以上のヌクレオチドが挙げられ、ここの具体的に列挙していない整数で表される長さ例えば、11などもまた、下限として適切であり得る。本明細書において、ポリペプチドおよびポリヌクレオチドの長さは、上述のようにそれぞれアミノ酸または核酸の個数で表すことができるが、上述の個数は絶対的なものではなく、同じ機能を有する限り、上限または下限としての上述の個数は、その個数の上下数個または例えば上下10のものも含むことが意図される。そのような意図を表現するために、本明細書では、個数の前に約を付けて表現することがある。しかし、本明細書では、約のあるなしはその数値の解釈に影響を与えないことが理解されるべきである。本明細書において有用なフラグメントの長さは、そのフラグメントの基準となる全長タンパク質の機能のうち少なくとも1つの機能が保持されているかどうかによって決定され得る。本明細書において生物学的機能とは、ある遺伝子またはそれに関する核酸分子もしくはポリペプチドについて言及するとき、その遺伝子、核酸分子またはポリペプチドが生体内において有し得る特定の機能をいい、本明細書ではプロモーター活性好ましくは特異的発現活性を有するものを含む。本明細書において、改変体とは、もとのポリペプチドまたはポリヌクレオチドなどの物質に対して、一部が変更されているものをいう。そのような改変体としては、置換改変体、付加改変体、欠失改変体、短縮truncated改変体、対立遺伝子変異体などが挙げられる。対立遺伝子alleleとは、同一遺伝子座に属し、互いに区別される遺伝的改変体のことをいう。従って、対立遺伝子変異体とは、ある遺伝子に対して、対立遺伝子の関係にある改変体をいう。種相同体またはホモログhomologとは、ある種の中で、ある遺伝子とアミノ酸レベルまたはヌクレオチドレベルで、相同性好ましくは、60以上の相同性、より好ましくは、80以上、85以上、90以上、95以上の相同性を有するものをいう。そのような種相同体を取得する方法は、本明細書の記載から明らかである。オルソログorthologとは、オルソロガス遺伝子orthologousgeneともいい、二つの遺伝子がある共通祖先からの種分化に由来する遺伝子をいう。例えば、多重遺伝子構造をもつヘモグロビン遺伝子ファミリーを例にとると、ヒトとマウスのαヘモグロビン遺伝子はオルソログであるが、ヒトのαヘモグロビン遺伝子とβヘモグロビン遺伝子はパラログ遺伝子重複で生じた遺伝子である。オルソログは、分子系統樹の推定に有用であることから、オルソログもまた、本発明において有用であり得る。本明細書において保存的に改変された改変体は、アミノ酸配列および核酸配列の両方に適用される。特定の核酸配列に関して、保存的に改変された改変体とは、同一のまたは本質的に同一のアミノ酸配列をコードする核酸をいい、核酸がアミノ酸配列をコードしない場合には、本質的に同一な配列をいう。このような塩基配列の改変法としては、制限酵素などによる切断、DNAポリメラーゼ、Klenowフラグメント、DNAリガーゼなどによる処理等による連結等の処理、合成オリゴヌクレオチドなどを用いた部位特異的塩基置換法特定部位指向突然変異法;MarkZollerandMichaelSmith,MethodsinEnzymology,100,468-5001983が挙げられるが、この他にも通常分子生物学の分野で用いられる方法によって改変を行うこともできる。本明細書において、ポリペプチドまたはポリヌクレオチドの置換、付加および/または欠失とは、もとのポリペプチドまたはポリヌクレオチドに対して、それぞれアミノ酸もしくはその代替物、またはヌクレオチドもしくはその代替物が、置き換わること、付け加わること、または取り除かれることをいう。このような置換、付加および/または欠失の技術は、当該分野において周知であり、そのような技術の例としては、部位特異的変異誘発技術などが挙げられる。基準となる核酸分子またはポリペプチドにおけるこれらの変化は、目的とする機能例えば、キク科植物における雄ずい特異的発現を誘導する能力などが保持される限り、この核酸分子の5’末端もしくは3’末端で生じ得るか、またはこのポリペプチドを示すアミノ酸配列のアミノ末端部位もしくはカルボキシ末端部位で生じ得るか、またはそれらの末端部位の間のどこにでも生じ得、基準配列中の残基間で個々に散在する。置換、付加または欠失は、1つ以上であれば任意の数でよく、そのような数は、その置換、付加または欠失を有する改変体において目的とする機能例えば、キク科植物における雄ずい特異的発現を誘導する能力などが保持される限り、多くすることができる。例えば、そのような数は、1または数個であり得、そして好ましくは、全体の長さの20以内、15以内、10以内、5以内、または150個以下、100個以下、50個以下、25個以下などであり得る。このような核酸は、周知のPCR法により得ることができ、化学的に合成することもできる。これらの方法に、例えば、部位特異的変位誘発法、ハイブリダイゼーション法などを組み合わせてもよい。本発明では、組換えベクターを用いて標的となる遺伝子を導入することができる。本発明の組換えベクターは、本発明のプロモーターに発現させるべき目的遺伝子を連結した遺伝子を適当なベクターに導入することにより構築することができる。ここで、ベクターとしては、アグロバクテリウムを介して植物に目的遺伝子を導入することができる、pBI系、pPZP系HajdukiewiczP,SvabZ,MaligaP.:PlantMolBiol.,25:989-94,1994、pCAMBIA系http://www.cambia.org/main/r_et_camvec.htm、pSMA系のベクターなどが好適に用いられる。特にpBI系のバイナリーベクターまたは中間ベクター系が好適に用いられ、例えば、pBI121、pBI101、pBI101.2、pBI101.3等が挙げられる。バイナリーベクターとは大腸菌Escherichiacoli及びアグロバクテリウムにおいて複製可能なシャトルベクターで、バイナリーベクターを保持するアグロバクテリムを植物に感染させると、ベクター上にあるLB配列とRB配列より成るボーダー配列で囲まれた部分のDNAを植物核DNAに組み込むことが可能であるEMBOJournal,103,697-7041991。一方、pUC系のベクターは、植物に遺伝子を直接導入することができ、例えば、pUC18、pUC19、pUC9等が挙げられる。また、カリフラワーモザイクウイルスCaMV、インゲンマメモザイクウイルスBGMV、タバコモザイクウイルスTMV等の植物ウイルスベクターも用いることができる。ベクターに目的遺伝子を挿入するには、まず、精製されたDNAを適当な制限酵素で切断し、適当なベクターDNAの制限酵素部位またはマルチクローニングサイトに挿入してベクターに連結する方法などが採用される。本発明において、目的遺伝子としては、対象となる植物における内因性遺伝子、または外来遺伝子であって、その遺伝子産物の発現が葉等において所望される任意の遺伝子をいう。かかる遺伝子としては、有用物質医薬、色素、芳香成分など生産遺伝子、植物生長制御促進抑制遺伝子、糖代謝関連遺伝子、耐病虫害性昆虫食害抵抗性、真菌菌類及び細菌病抵抗性、ウイルス病抵抗性など遺伝子、環境ストレス低温、高温、乾燥、光障害、紫外線抵抗性関連遺伝子、形態形、大きさ、器官の数など等が挙げられるが、これらに限定はされない。上記の目的遺伝子は、その遺伝子の機能が発揮されるようにベクターに組み込まれることが必要である。そこで、ベクターには、目的遺伝子の上流、内部、あるいは下流に、本発明のプロモーター、エンハンサー、イントロン、ポリA付加シグナル、5’-UTR配列、選択マーカー遺伝子などを連結することができる。エンハンサーとしては、例えば、目的遺伝子の発現効率を高めるために用いられ、キク科植物において用いられるものであればどのようなものを用いてもよいが、CaMV35Sプロモーター内の上流側の配列を含むエンハンサー領域などが挙げられる。ターミネーターとしては、プロモーターにより転写された遺伝子の転写を終結できる配列であればよく、キク科植物において用いられるものであればどのようなものを用いてもよく、例えば、ノパリン合成酵素遺伝子のターミネーター、オクトピン合成酵素遺伝子のターミネーター、CaMV35SRNA遺伝子のターミネーター等が挙げられる。本発明において、選択マーカー遺伝子としては、キク科植物において用いられるものであればどのようなものを用いてもよく、例えば、ハイグロマイシン耐性遺伝子、カナマイシン耐性遺伝子、ビアラホス耐性遺伝子、ブラストサイジンS耐性遺伝子、アセト乳酸合成酵素Acetolactatesynthase遺伝子などが挙げられる。また、選択マーカー遺伝子は、上記のように目的遺伝子とともに同一のプラスミドに連結させて組換えベクターを調製してもよいが、あるいは、選択マーカー遺伝子をプラスミドに連結して得られる組換えベクターと、目的遺伝子をプラスミドに連結して得られる組換えベクターとを別々に調製してもよい。別々に調製した場合は、各ベクターを宿主に共トランスフェクトする。本明細書において、外来の遺伝子を導入した植物は、組換え植物体または形質転換植物体という。本発明の外来DNA配列に関し外来という用語は、この外来DNA配列が外来雄性不稔DNA遺伝子を含有することを意味する。DNA、たとえば雄性不稔DNAその他の外来DNA配列における他のDNAに関し外来という用語は、本発明にしたがってそのDNAにより形質転換される植物細胞における同じゲノム環境に存在せず、たとえば植物、細菌、動物、真菌、ウイルスなどの細胞に天然に存在してそこからそのDNAが得られるようなDNAを意味する。本明細書において、DNA、たとえば雄性不稔DNAその他の外来DNA配列におけるDNAに関し異種という用語は、この種のDNAが形質転換される植物と同じ遺伝子型を有する植物の細胞の核ゲノムには天然に存在しないことを意味する。異種DNAの例は、形質転換される植物と同じ遺伝子型を有する植物から得られる葉緑体およびミトコンドリアDNAを包含するが、好適例は形質転換される植物とは異なる遺伝子型を有する植物からの葉緑体、ミトコンドリアおよび核DNA、動物および細菌ゲノムからのDNA、並びに真菌およびウイルスゲノムからの染色体およびプラスミドDNAを包含する。ここで、本発明で調製した組換えベクターを用いて、対象植物を形質転換し、組換え植物体を調製することができる。組換え植物体を調製する際には、公知の種々の確立された方法を適宜利用することができる。例えば、アグロバクテリウム法、PEG-リン酸カルシウム法、エレクトロポレーション法、リポソーム法、パーティクルガン法、マイクロインジェクション法等が挙げられる。アグロバクテリウム法を用いる場合は、プロトプラストを用いる場合、組織片を用いる場合、及び植物体そのものを用いる場合inplanta法がある。プロトプラストを用いる場合は、Tiプラスミドをもつアグロバクテリウムと共存培養する方法、スフェロプラスト化したアグロバクテリウムと融合する方法スフェロプラスト法、組織片を用いる場合は、対象植物の無菌培養葉片リーフディスクに感染させる方法やカルスに感染させる等により行うことができる。また種子あるいは植物体を用いるinplanta法を適用する場合、すなわち植物ホルモン添加の組織培養を介さない系では、吸水種子、幼植物幼苗、鉢植え植物などへのアグロバクテリウムの直接処理等にて実施可能である。本発明において、遺伝子が植物体に組み込まれたか否かの確認は、PCR法、サザンハイブリダイゼーション法、ノーザンハイブリダイゼーション法、ウェスタンブロッティング法等により行うことができる。例えば、組換え植物体からDNAを調製し、DNA特異的プライマーを設計してPCRを行う。PCRを行った後は、増幅産物についてアガロースゲル電気泳動、ポリアクリルアミドゲル電気泳動またはキャピラリー電気泳動等を行い、臭化エチジウム、SYBRGreen液等により染色し、そして増幅産物を1本のバンドとして検出することにより、形質転換されたことを確認することができる。また、予め蛍光色素等により標識したプライマーを用いてPCRを行い、増幅産物を検出することもできる。さらに、マイクロプレート等の固相に増幅産物を結合させ、蛍光または酵素反応等により増幅産物を確認する方法でもよい。本発明において、形質転換の対象とする植物材料としては、例えば、根、茎、葉、種子、胚、胚珠、子房、茎頂植物の芽の先端の生長点、葯、花粉等の植物組織やその切片、未分化のカルス、それを酵素処置して細胞壁を除いたプロプラスト等の植物培養細胞が挙げられる。またinplanta法適用の場合、吸水種子や植物体全体を利用し得る。また、本発明において組換え植物体とは、植物体全体、植物器官例えば根、茎、葉、花弁、種子、実等、植物組織例えば表皮、師部、柔組織、木部、維管束等、植物培養細胞のいずれをも意味しうるものであり、狭義に使用する場合は、植物体全体をさすことがある。本発明において、植物培養細胞を対象とする場合において、得られた組換え細胞から組換え体植物体を再生させるためには既知の組織培養法により器官または個体を再生させればよい。このような操作は、植物細胞から植物体への再生方法として一般的に知られている方法により、当業者であれば容易に行うことができる。植物細胞から植物体への再生については、例えば、以下のように行うことができる。まず、形質転換の対象とする植物材料して植物組織またはプロトプラストを用いた場合、これらを無機要素、ビタミン、炭素源、エネルギー源としての糖類、植物生長調節物質オーキシン、サイトカイニン等の植物ホルモン等を加えて滅菌したカルス形成用培地中で培養し、不定形に増殖する脱分化したカルスを形成させる以下カルス誘導という。このように形成されたカルスをオーキシン等の植物生長調節物質を含む新しい培地に移しかえて更に増殖継代培養させる。本発明において使用されうるカルス誘導は寒天等の固型培地で行い、継代培養は例えば液体培養で行うと、それぞれの培養を効率良くかつ大量に行うことができる。次に、上記の継代培養により増殖したカルスを適当な条件下で培養することにより器官の再分化を誘導し以下、再分化誘導という、最終的に完全な植物体を再生させる。再分化誘導は、培地におけるオーキシンやサイトカイニン等の植物生長調節物質、炭素源等の各種成分の種類や量、光、温度等を適切に設定することにより行うことができる。かかる再分化誘導により、不定胚、不定根、不定芽、不定茎葉等が形成され、更に完全な植物体へと育成させる。あるいは、完全な植物体になる前の状態例えばカプセル化された人工種子、乾燥胚、凍結乾燥細胞及び組織等で貯蔵等を行ってもよい。本発明の組換え植物体は、形質転換を施した再分化当代であるT1世代のほか、その植物の種子から得られた後代であるT2世代、薬剤選択あるいはサザン法等による解析によりトランスジェニックであることが判明したT2世代植物の花を自家受粉して得られる次世代すなわちT3世代等の後代植物子孫をも含む。本明細書において表現型とはある植物を他と区別する特色または特徴のことであり、1つまたは複数の所望のポリヌクレオチドおよび/またはスクリーニング用/選択用マーカーを、形質転換植物の少なくとも1つの植物細胞のゲノム中に組み込むことにより、本発明に従って変更することができる。所望のポリヌクレオチドおよび/またはマーカーは、形質転換された植物細胞または植物全体のさまざまな遺伝的、分子的、生化学的、生理的、形態学的または農学的な特徴または特色を改変することにより、形質転換植物の表現型に変化を付与することができる。したがって、植物ゲノムに安定的に組み込まれた1つまたは複数の所望のポリヌクレオチドの発現は、例えば、耐乾性の向上、耐寒性および耐霜性の強化、活力の改善、色調の強化、健康上および栄養上の特徴の強化、保存性の改善、収量の強化、耐塩性の強化、耐重金属性の強化、耐病性の向上、耐虫性の向上、耐水ストレス性の向上、甘みの強化、活力の改善、味の改善、質感の改善、リン酸含有量の減少、発芽の向上、微量栄養素の取り込みの向上、デンプン組成の改善および花寿命の改善からなる群より選択される表現型を生じる可能性がある。本明細書において、トランスジェニック植物の子孫のような本発明の子孫は、植物またはトランスジェニック植物を雄性親として生まれた、雌性親として生まれた、またはそれから派生したものである。したがって、子孫植物、すなわちF1世代植物は、本発明の方法によって作製されたトランスジェニック植物の後裔または派生物である。トランスジェニック植物の子孫は、その細胞ゲノムの少なくとも1つ、いくつかまたはすべての中に、本明細書に記載された方法によって親トランスジェニック植物の細胞に組み込まれた所望のポリヌクレオチドを含みうる。したがって、所望のポリヌクレオチドは、子孫植物に伝達または遺伝される。そのようにして子孫植物に遺伝する所望のポリヌクレオチドはT-DNA構築物の内部にあり、それもまた子孫植物にその親から遺伝する。本明細書で用いる子孫という用語を、一群の植物の末裔または派生物であると考えることもできる。本明細書において種子とは、植物の胚、および塊茎または胞子のような繁殖部分を含む、成熟した植物胚珠をいう。種子は、アグロバクテリウムを介した形質転換の前に、例えば発芽を促進させるために暗所でインキュベートすることができる。インキュベーションの前に、漂白剤による短時間の処理などによって種子を滅菌することもできる。続いて、その結果生じた実生をアグロバクテリウムの所望の菌株に曝露させることができる。本明細書においてトランスジェニック植物は、内部に外因性核酸が安定的に組み込まれた少なくとも1つの細胞ゲノムを含む植物をいう。したがって、トランスジェニック植物は、形質転換植物に包含されうる。本発明によれば、トランスジェニック植物とは、ただ1つのみの遺伝的に改変された細胞および細胞ゲノムを含みうる植物であり、またはそれが複数もしくは多数の遺伝的改変細胞を含んでもよく、細胞のすべてが遺伝的に改変されていてもよい。本発明のトランスジェニック植物は、所望のポリヌクレオチド、すなわち外因性核酸の発現が、植物の特定の部分のみで起こるものである。したがって、トランスジェニック植物は、その構造の特定の部分のみに遺伝的に改変された細胞を含みうる。本明細書において単離された核酸分子とは、その天然の環境から取り出された核酸分子例えば、DNAまたはRNAをいう。例えば、ベクターに含まれる組換えDNA分子は、本発明の目的上は単離されているとみなされる。単離されたDNA分子のさらなる例には、異種宿主細胞内に維持される組換えDNA分子、および、溶液中にある部分的または実質的に精製されたDNA分子が含まれる。単離されたRNA分子には、本発明のDNA分子のインビトロでのRNA転写物が含まれる。本発明によれば、単離された核酸分子にはさらに、合成的に製造されたこのような分子も含まれる。本発明の核酸分子は、mRNAなどのRNAの形態であってもよく、または、クローニングにより得られたもしくは合成的に製造された、例えばcDNAおよびゲノムDNAを含むDNAの形態にあってもよい。DNAまたはRNAは二本鎖でも一本鎖でもよい。一本鎖DNAは、センス鎖としても知られるコード鎖でもよく、またはアンチセンス鎖とも呼ばれる非コード鎖でもよい。植物の形質転換に用いるのに特に有用な、アグロバクテリウムを基にした植物形質転換ベクターとしては、L.Y.LeeandS.B.Gelvin2008T-DNABinaryVectorsandSystem.PlantPhysiology146:325-332.に記載されるベクター等が挙げられる。本発明のベクターは、組換えベクターDNAを標的宿主細胞に導入するための当該分野で公知の標準的な手順によって宿主細胞に導入される。このような手順には、トランスフェクション、感染、形質転換、自然な取込み、電気泳動、遺伝子銃およびアグロバクテリウムが非限定的に含まれる。外来性遺伝子を植物に導入するための方法は当該分野で公知であり、本発明のベクター等の遺伝子構築物を植物宿主に導入するために用いることができ、これには生物学的および物理的な植物形質転換プロトコールが含まれる。例えば、Mikietal.,1993,ProcedureforIntroducingForeignDNAIntoPlantsIn:MethodsinPlantMolecularBiologyandBiotechnology,GlickandThompson,eds.,CRCPress,Inc.,BocaRaton,pages67-88を参照のこと。選択される方法は宿主植物によって異なり、これにはリン酸カルシウムなどの化学的トランスフェクション法、アグロバクテリウムなどの微生物を介した遺伝子導入Horschetal.,Science227:1229-31,1985、電気泳動、微量注入法および微粒子射入法が含まれる。上記のように取得した改変体DNA、ハイブリダイゼーションにより得られるホモログがプロモーターとしての活性を有するか否かは、種々のレポーター遺伝子、例えばベータグルクロニダーゼGUS、ルシフェラーゼLUC、GreenfluorescentproteinGFP、クロラムフェニコールアセチルトランスフェラーゼCAT、ベータガラクトシダーゼGAL、ノパリン合成酵素NOS、オクトピン合成酵素OCS等の遺伝子を上記プロモーターの下流域に連結したベクターを作製し、該ベクターを用いて従来から周知慣用されている本明細書において例示されるような種々の形質転換法により植物細胞のゲノムに挿入した後、そのレポーター遺伝子の発現を測定することにより確認できる。例えば、レポーター遺伝子がGUSの場合には、宿主細胞内でのプロモーター活性は、iヒストケミカルなGUS染色による方法EMBOJ.6,3901-39071987により、および/またはii蛍光基質を用いるCastleMorrisの方法PlantMolecularBiologyManual,B5,1-161994;S.B.GelvinR.A.Schilperoort,KluwerAcademicPublishersに従ってGUS活性を測定し、さらにBradfordの方法Anal.Biochem.72,248-2541976に従ってタンパク質量を測定して、GUS活性をタンパク量当たりに換算するnmole4-MU/min/mgproteinとして算出することにより、それぞれ確認することができる。本明細書において植物という用語は、格別に限定しないで用いるときは、植物の普通の意味の範囲を超えて、植物の果実、種子、花、球果なども意味するものとする。本発明の植物は、ベクターがアグロバクテリウムなどによって植物内に直接導入されたことを意味する直接的な組換え体またはトランスフェクト体であってもよく、または植物がトランスフェクトされた植物の子孫であってもよい。第二世代またはその後の世代の植物は、有性生殖、すなわち受精によって作製されたものでもそうでないものでもよい。さらに、植物は配偶体半数体期または胞子体二倍体期でもありうる。本明細書において、キク科植物とは、当該分野において通常用いられる意味と同義で用いられ、AsteraceaeCompositaeの科に属する任意の植物が該当する。キク科植物としては、例えば、Cirsiumアザミ、Arctiumゴボウ、Chrysanthemumシュンギク、Artemisiaヨモギ、Erigeronハルジオン、Asterシオン、Kalimerisヨメナ、Eupatoriumフジバカマ、Ambrosiaブタクサ、Xanthiumオナモミ、Dahliaダリア、Cosmosコスモス、Helianthusヒマワリ、Gnaphaliumハハコグサ、Leontopodiumウスユキソウ、Gerberaガーベラ、Petasitesフキ、Arnicaウサギギク、Senecioキオン、Veronicaショウジョウハグマ、Ixerisニガナ、Lactucaアキノノゲシ、Taraxacumタンポポ、Crepisフタマタタンポポを挙げることができるが、これらに限定されない。1つの例としては、Chrysanthemum属の植物を挙げることができ、その中でも、キクChrysanthemum×morifoliumが代表的に用いられるがこれに限定されない。本明細書において雄性不稔化とは、雄性器官例えば、雄ずいに対して、次代の植物として発達できる種子を生じなくさせることをいう。自殖性植物でヘテロシス育種を行う場合に、雄性不稔系統を母本にすると雑種種子の生産が容易になることから、育種上ひろく利用されている。この性質を戻し交雑育種によって多数の品種に移し、組合せ能力の高い雄性不稔系統を育成することができる。本発明において、雄性不稔化するための方法については、雄性生殖器官の細胞の死滅または無能化をもたらす遺伝情報で植物を遺伝子操作することによって雄性不稔植物を得ることができる。このような方法は主として、RNアーゼ、プロテアーゼまたは細菌毒素などといった毒性の高い因子をその細胞内で雄ずい特異的に産生させるという概念に基いている。あるいは必須遺伝子の転写物に対するアンチセンスRNAまたはリボザイムが産生される。これらの方法はいずれも、導入された構築物が雄性生殖器官である雄ずいの細胞で高度に特異的に発現し、他の組織では発現しないことを必要とする。他の組織での発現は、その植物の生育に有害になるからである。本発明において、雄性不稔遺伝子自体の選択は重要でなく、例えば、細胞死を起こす遺伝子、RNA分解酵素をコードする遺伝子、減数分裂に関与する遺伝子、形態形成に関する遺伝子を用いることができる。さらなる例示的な雄性不稔遺伝子としては、これが雄性不稔DNAを発現する雄ずい細胞の適切な代謝、機能および/または発育を顕著に阻害して、好ましくはこれにより全ての雄ずい細胞の死滅をもたらすRNAリボザイム、アプタマー等、ポリペプチドまたはタンパク質をコードするよう周知方法で選択しかつ分離することができる。雄性不稔DNAの代表的な例としては、例えば、RNアーゼT1のようなRNアーゼこれはグアニン残基の後で結合を加水分解することによりRNA分子を分解するおよびバルナーゼBarnase;たとえばエンドヌクレアーゼのようなDNアーゼたとえばEcoRI;またはたとえばパパインのようなプロテアーゼたとえばパパインチモーゲンおよびパパイン活性タンパク質をコードするものを挙げることができる。雄性不稔DNAがコードするものの他の例としては、植物ホルモンの合成を触媒する酵素例えば、サイトカイニン生合成における第1過程を触媒する、アグロバクテリウムT-DNAの遺伝子4cytによりコードされる酵素であるイソペンテニルトランスフェラーゼ;およびオーキシンの合成に関与しかつアグロバクテリウムT-DNAの遺伝子1aux-1および遺伝子2aux-2によりコードされる酵素などを挙げることができる。雄性不稔DNAがコードするもののさらに他の例は、グルカナーゼ;リパーゼ、たとえばホスホリパーゼA2Verheij等1981、Rev.Biochem.Pharmacol.,第91巻,第92~203頁;脂質ペルオキシダーゼ;または植物細胞壁の阻害剤が挙げられる。さらに他の雄性不稔DNAの例は、植物細胞に対し毒性である蛋白、たとえば細菌毒素たとえばジフテリアトキシンのB-断片、すなわちボツリンbotulinをコードする。さらに他の雄性不稔DNAの例は、たとえばヨーロッパ特許公開第0,223,399号に記載されたような内在性プロモータの制御下で植物の雄蕊細胞中で天然に転写されるDNA鎖に相補的なDNA鎖をコードするアンチセンスDNAである。この種のアンチセンスDNAは、雄蕊細胞中で天然に産生されるRNAのコード化および/または非コード化部分に結合しうるRNA配列アンチセンスRNAに転写されて、天然産生されたRNAの翻訳を阻止することができる。この種のアンチセンスDNAの例は、植物における葯のタペータム細胞中でTA29プロモータの制御下に天然に発現されTA29遺伝子のアンチセンスDNAである。雄性不稔DNAの他の例は、HaseloffandGerlach1988,Nature,第334巻,第585~591頁に記載されたような所定の標的配列に対し高特異的開裂を行ないうる特定のRNA酵素すなわち、いわゆるリボザイムをコードする。この種のリボザイムは、たとえばTA29遺伝子によりコードされるRNAを標的とするリボザイムである。さらに他の雄性不稔DNAの例は、雄蕊細胞を特定の病気、たとえば真菌感染に対し感受性にしうる物質をコードする。この種の雄性不稔DNAは、雄性不稔DNAを発現しない他の全ての細胞が特定の病気に対し耐性である植物に使用することができる。雌性不稔性遺伝子のさらにもう1つの例には、アンチセンス核酸、または短鎖干渉性RNAsiRNAなどのようなRNA干渉RNAiに関与するRNAがあり、これらは標的とした遺伝子の発現を阻害または完全に阻止するために有用な可能性がある。例えば、本発明のアンチセンス分子またはRNAi分子は、例えば欧州特許公報第0,223,399号に記載されたように、植物の生殖細胞において内因性プロモーターの制御下で自然下に転写される鎖に対して相補的な核酸鎖をコードする。このようなアンチセンス核酸またはRNAi分子は、自然下に産生されたRNAの翻訳を阻害させるために、生殖細胞において自然下に産生されるRNAのコード部分および/または非コード部分に対して結合することができる。1つの態様において、本発明のアンチセンス核酸およびRNAi分子は、植物の相補的内因性DNA鎖または遺伝子の内因性プロモーターの制御下で、植物の花、胚珠生成性の錐、種子、胚、雌性配偶子、雌性配偶体、大胞子母細胞および前雌性生殖構造において発現させることができる。一般技術本明細書において用いられる分子生物学的手法、生化学的手法、微生物学的手法は、当該分野において周知であり慣用されるものであり、例えば、SambrookJ.etal.1989.MolecularCloning:ALaboratoryManual,ColdSpringHarborおよびその3rdEd.2001;Ausubel,F.M.1987.CurrentProtocolsinMolecularBiology,GreenePub.AssociatesandWiley-Interscience;Ausubel,F.M.1989.ShortProtocolsinMolecularBiology:ACompendiumofMethodsfromCurrentProtocolsinMolecularBiology,GreenePub.AssociatesandWiley-Interscience;Innis,M.A.1990.PCRProtocols:AGuidetoMethodsandApplications,AcademicPress;Ausubel,F.M.1992.ShortProtocolsinMolecularBiology:ACompendiumofMethodsfromCurrentProtocolsinMolecularBiology,GreenePub.Associates;Ausubel,F.M.1995.ShortProtocolsinMolecularBiology:ACompendiumofMethodsfromCurrentProtocolsinMolecularBiology,GreenePub.Associates;Innis,M.A.etal.1995.PCRStrategies,AcademicPress;Ausubel,F.M.1999.ShortProtocolsinMolecularBiology:ACompendiumofMethodsfromCurrentProtocolsinMolecularBiology,Wiley,andannualupdates;Sninsky,J.J.etal.1999.PCRApplications:ProtocolsforFunctionalGenomics,AcademicPress、別冊実験医学遺伝子導入発現解析実験法羊土社、1997などに記載されており、これらは本明細書において関連する部分全部であり得るが参考として援用される。人工的に合成した遺伝子を作製するためのDNA合成技術および核酸化学については、例えば、Gait,M.J.1985.OligonucleotideSynthesis:APracticalApproach,IRLPress;Gait,M.J.1990.OligonucleotideSynthesis:APracticalApproach,IRLPress;Eckstein,F.1991.OligonucleotidesandAnalogues:APracticalApproac,IRLPress;Adams,R.L.etal.1992.TheBiochemistryoftheNucleicAcids,ChapmanHall;Shabarova,Z.etal.1994.AdvancedOrganicChemistryofNucleicAcids,Weinheim;Blackburn,G.M.etal.1996.NucleicAcidsinChemistryandBiology,OxfordUniversityPress;Hermanson,G.T.I996.BioconjugateTechniques,AcademicPressなどに記載されており、これらは本明細書において関連する部分が参考として援用される。好ましい実施形態の説明以下に好ましい実施形態の説明を記載するが、この実施形態は本発明の例示であり、本発明の範囲はそのような好ましい実施形態に限定されないことが理解されるべきである。当業者はまた、以下のような好ましい実施例を参考にして、本発明の範囲内にある改変、変更などを容易に行うことができることが理解されるべきである。雄ずい特異的に遺伝子発現をさせるための組成物1つの局面において、本発明は、トマトのスクロース合成酵素遺伝子SSのプロモーター含有核酸TOMSSFまたはその改変体のうち必要領域である配列番号1のヌクレオチド1位~1676位を含む、キク科植物において雄ずい特異的に遺伝子発現をさせるための組成物を提供する。1つの実施形態では、本発明において用いられるTOMSSFは配列番号1に記載の配列またはその改変体を含む。本発明のTOMSSFとして使用されうる配列番号1の改変体としては、キク科植物において雄ずい特異的に遺伝子発現を誘導する能力が維持される限りどのような改変体を用いても良いことが理解される。そのような改変体としては、配列番号1に対して置換、付加および欠失からなる群より選択される変異を1つ以上あるいは1または数個含むもののような配列が挙げられる。キク等のキク科植物には倍数性があり、導入遺伝子のサイレンシングが起きやすいが、TOMSSFは発現量が高く、組織特異性であることから、これまでにない組換えキク科植物の生産において寄与することが理解される。本発明がキク科植物において雄ずい特異的に遺伝子発現をさせるための対象としては、いかなるものであってもよいことが理解される。例えば、1つの代表的な実施形態としては、雄性不稔化のためのものであってもよいがそれに限定されない。そのような遺伝子発現される対象としては、例えば、雄ずいを花弁化することにより八重化を引き起こす遺伝子、例えばAidaetal.2008PlantBiotechnology25:55-59.で利用されている、キクのクラスC遺伝子キクAGAMOUS遺伝子CAG等を挙げることができるがそれらに限定されない。本発明が対象とするキク科植物は、本発明のプロモーターが雄ずい特異的に遺伝子発現するキク科植物であればどのようなものでもよく、例えば、キクChrysanthemum×morifoliumが挙げられるがそれに限定されない。本発明において、雄ずい特異的なレベルは、目的に応じてそのレベルを選択することができ、雄ずいに対する発現が、他の組織に対する発現より多ければ特異的であるといえるが、好ましくは、雄ずいに対する発現が、他の組織に対する発現の少なくとも約2倍、少なくとも約3倍、少なくとも約4倍、少なくとも約5倍、少なくとも約10倍、少なくとも約20倍、少なくとも約30倍、少なくとも約40倍、少なくとも約50倍、少なくとも約60倍、少なくとも約70倍、少なくとも約80倍、少なくとも約90倍、少なくとも約100倍でありうる。ベクター別の局面において、本発明は、トマトのスクロース合成酵素遺伝子SSのプロモーター含有核酸TOMSSFまたはその改変体のうち必要領域である配列番号1のヌクレオチド1位~1676位を含むベクターを提供する。本発明のベクターの種々の実施形態では、雄ずい特異的に遺伝子発現をさせるための組成物において記載した任意の実施形態を用いることができることが理解される。本発明のベクターは、発現させるべき目的遺伝子をコードする核酸配列をさらに含みうる。そのような核酸配列は、本発明のプロモーターTOMSSFに作動可能に連結される。本発明のベクターは、キク科植物において雄ずい特異的に遺伝子発現をさせるために用いることができる。あるいは、本発明のベクターは、キク科植物において雄ずい特異的に遺伝子発現を減少または消失させるために用いることもできる。あるいは、本発明のベクターは、雄性不稔化のために用いることができる。このような目的遺伝子は、外来のものであってよく、異種のものであってもよく、あるいは、同種異系のものであってもよい。あるいは、内因性のものであっても、目的によっては使用されることが理解される。1つの実施形態では、本発明のベクターが対象とするキク科植物は、キクChrysanthemum×morifoliumでありうる。本発明において、本発明のベクターが達成しようとする特異的な遺伝子発現は、目的に応じてそのレベルを選択することができ、例えば、そのレベルは、雄ずいに対する発現が、他の組織に対する発現の少なくとも約2倍、少なくとも約3倍、少なくとも約4倍、少なくとも約5倍、少なくとも約10倍、少なくとも約20倍、少なくとも約30倍、少なくとも約40倍、少なくとも約50倍、少なくとも約60倍、少なくとも約70倍、少なくとも約80倍、少なくとも約90倍、少なくとも約100倍でありうる。細胞等1つの局面では、本発明は、トマトのスクロース合成酵素遺伝子SSのプロモーター含有核酸TOMSSFを含む組換え細胞を提供する。本発明の細胞は、トマトのスクロース合成酵素遺伝子SSのプロモーター含有核酸TOMSSFを直接含んでいてもよく、ベクターに挿入された形で含んでいてもよい。本発明の細胞の種々の実施形態では、雄ずい特異的に遺伝子発現をさせるための組成物、ベクターにおいて記載した任意の実施形態を用いることができることが理解される。別の局面では、本発明は、トマトのスクロース合成酵素遺伝子SSのプロモーター含有核酸TOMSSFを含むアグロバクテリウムを提供する。本発明のアグロバクテリウムは、トマトのスクロース合成酵素遺伝子SSのプロモーター含有核酸TOMSSFを直接含んでいてもよく、ベクターに挿入された形で含んでいてもよい。本発明のアグロバクテリウムの種々の実施形態では、雄ずい特異的に遺伝子発現をさせるための組成物、ベクターにおいて記載した任意の実施形態を用いることができることが理解される。他の局面では、本発明は、トマトのスクロース合成酵素遺伝子SSのプロモーター含有核酸TOMSSFを含む組換え組織を提供する。本発明の組換え組織は、トマトのスクロース合成酵素遺伝子SSのプロモーター含有核酸TOMSSFを直接含んでいてもよく、ベクターに挿入された形で含んでいてもよい。本発明の組換え組織の種々の実施形態では、雄ずい特異的に遺伝子発現をさせるための組成物、ベクターにおいて記載した任意の実施形態を用いることができることが理解される。このような組織は、本発明の組換え細胞から再生することによって入手することもできる。他の局面では、本発明は、トマトのスクロース合成酵素遺伝子SSのプロモーター含有核酸TOMSSFを含む組換え植物を提供する。本発明の組換え植物は、トマトのスクロース合成酵素遺伝子SSのプロモーター含有核酸TOMSSFを直接含んでいてもよく、ベクターに挿入された形で含んでいてもよい。本発明の組換え植物の種々の実施形態では、雄ずい特異的に遺伝子発現をさせるための組成物、ベクターにおいて記載した任意の実施形態を用いることができることが理解される。このような組織は、本発明の組換え細胞からカルスを経ることなどによって再生することによって入手することもできる。本明細書において引用された、科学文献、特許、特許出願などの参考文献は、その全体が、各々具体的に記載されたのと同じ程度に本明細書において参考として援用される。以上、本発明を、理解の容易のために好ましい実施形態を示して説明してきた。以下に、実施例に基づいて本発明を説明するが、上述の説明および以下の実施例は、例示の目的のみに提供され、本発明を限定する目的で提供したのではない。従って、本発明の範囲は、本明細書に具体的に記載された実施形態にも実施例にも限定されず、特許請求の範囲によってのみ限定される。以下の実施例で用いた植物等の取り扱いは、農林水産省等において規定される基準を遵守した。実施例1:プロモーターのクローニング本明細書では、TOMSSFのプロモーター含有核酸をクローニングした。実験の手法トマト品種秋玉、野菜茶業試験場育成は、野菜茶業研究所の温室で土耕栽培し、若い葉を採取後、当該分野で周知のCTAB法MurrayとThompson,1980によりゲノムDNAを抽出した。InversePCR法を用い、プロモーター領域を増幅した。その方法は以下のとおりである。まず、得られたゲノムDNAを制限酵素MunIタカラバイオ株、1153Aで切断しセルフライゲーション16°Cで30分~一晩を行った。ライゲーション後、制限酵素AflIIタカラバイオ株、1003Aで切断した。その後、プロモーター領域を挟み込む形で設計したプライマー5’-CACTCAGGTAATTCGGGTTTG-3’=配列番号2LeSUS485-505、5’-TAGTTGATTCAGCAGATGGG-3’=配列番号3LeSUS60-41インビトロジェン株カスタムプライマーを用いPCR95°Cで30秒加熱後、95°Cで20秒、62°Cで30秒、72°Cで5分のサイクルを25回繰り返し、最後に72°Cで10分間処理を行った。増幅断片をpGEMベクタープロメガ株、A3600にクローニングし、配列翻訳開始点上流配列配列番号4および5、文献JARQ,44:17-23,2010の図2B以下に示す。に該当する。比較対象のmRNA下段は、公開されている配列L19762TOMSSFである。をシークエンサーアプライドバイオシステムズ社373Aにより確認し、プロモーター領域と判断した。上記でクローニングしたプロモーター領域は制限酵素HindIIIタカラバイオ株、1060A、およびXbaI、タカラバイオ株、1093A切断後、ベクターpBI101クロンテック社、6017-1のGUS遺伝子上流HindIII-XbaI部位の間にインサーションし、バイナリーベクターを作製した。実施例2:キクの形質転換本実施例では、実施例1でクローニングしたTOMSSFのプロモーター含有核酸を用いてキクの形質転換を行った。材料キク’セイマリン’:有精興園から入手したものを使用した。アグロバクテリウムEHA105:Dr.Hoodから入手したものを使用したDepartmentofBiology,UtahStateUniversity,Logan,UT84322-5305,USAHoodetal.1993TransgenicResearch2:208-218。4.ベクターpBI101:クロンテック社から購入したものを使用した6017-1。方法1アグロバクテリウムEHA105を適当な培地YEB培地5g/lsucrose,1g/lbeefextract,1g/lyeastextract,1g/lpeptoeで培養後、アグロバクテリウムをかき取り、10mM硫酸マグネシウム溶液ナカライテクスの10034-99-8に懸濁したOD550=0.1程度、島津製作所分光光度計UV-2200で測定した。。TweenTM20ナカライテスク9005-64-5110mlに対し100μl、アセトシリンゴンフナコシSSX6001100μM10mlに対し1μlになるよう加えた。その後、アグロバクテリウム懸濁液を滅菌シャーレに小分けにした例えば、2枚ずつ。滅菌シャーレにろ紙を入れ滅菌水で湿らせた。2キク‘セイマリン’精興園より入手可能の葉をメスで5mm角程度に切り、数枚分の葉をアグロバクテリウム懸濁液に入れた。この際、アグロバクデリウムが付着したピンセットをキク材料を取り出すときに使わないよう注意した。葉を20分浸漬した後、余分な液を滅菌したキムタオル等のワイパー上で除いて、共存培養培地以下を参照に置床した。その後、インキュベータサンヨーMIR-554内22°C暗黒下で共存培養した2日間。このとき、スイッチON時には、温度が22°Cになっていることを確認して培養を行った。32日後、外植片を、カルベニシリンナカライテスク07129-14300mg/l、TweenTM201を含む10mM硫酸マグネシウム溶液除菌液中で、25°Cで1時間振とうした。このとき、アグロバクテリウムが増殖していない場合、異常に多い場合、色や形状が普段と異なる場合がないか確認して実験を行った。プラントボックスイワキCUL-JAR300に入ったキムタオル等のワイパーに除菌液を入れた。プラントボックスからキムタオル等のワイパーを出し、別の滅菌したキムタオル等のワイパー上に置いた。その後、外植片を選択培地に移した。20°Cの培養室で、低照度下で培養した。以後、2週間ごとに新しい選択培地以下を参照に移して培養を行った。4シュートが2-3mm長になったところで発根培地以下を参照に移し、抗生物質抵抗性を確認した発根テスト;正常に発根するものが形質転換体、発根しないものは非形質転換体と判断した。このようにして、順化し閉鎖系温室最低気温20°C、最高気温30°C設定で20-30°Cの間は成り行き設定で栽培を行った。培地使用した培地は以下のとおりである。共存培養培地シャーレMSBA1.0mg/lNAA2.0mg/lカザミノ酸1g/lアセトシリンゴン100μM選択培地シャーレMSBA1.0mg/lNAA2.0mg/lカルベニシリン300mg/lパロモマイシン25mg/l発根培地プラントボックス1/2MSシオマリン50mg/lパロモマイシン10mg/l選択培地および発根培地では、寒天8g/lを用いた。ここで、MSとはMSパウダー日本製薬株392-00591を意味する。BAはベンジルアデニンナカライテスク06399-01、NAAは1-ナフタレン酢酸ナカライテスク23628-32をいう。MSビタミン最終濃度は以下の通りである。Myo-イノシトール100mg/lナカライテスク19213-95、ニコチン酸0.5mg/lナカライテスク24326-52、グリシン2mg/lナカライテスク17109-22、塩酸ピリドキシン0.5mg/lナカライ29611-52、塩酸チアミン0.1mg/lナカライテスク36319-82、MSパウダー、スクロースナカライテスク30404-45、ゲランガム和光075-03075、寒天和光純薬工業株016-11875。なお、当該分野で知られているように、MS培地に含まれるビタミン類のことをMSビタミンと呼ぶ。本明細書で使用している日本製薬のMSパウダーにMSビタミンが含まれていないため、別途作製し、加えた。植換え方法プラントボックス植物の植換えは、キクプラントボックス当たり4本については以下のとおりである。通常は頂芽3cm長程度をピンセットで折取り、培地に1cm程度挿す。頂芽が無いときや数を増やす必要があるときは、頂芽より下の部分を3cm長程度にメスで切り取り培地に1cm程度挿す。メスで切るときは、プラントボックスの側面をまな板の代わりにすることができる。急いで大量に増殖する必要があるときは、節1つごとに切り出し植えることもできる。この場合は長さは問わず、節の直上部分で切る。結果結果を図1~4に示す。図1は、GUS染色を示す。AおよびBは野生型を示す。CおよびDは、987-15を示す。EおよびFは、987-17を示す。GUS活性が高い組織は青く染色されている。図2は、GUS染色を示す。AおよびBは野生型を示す。CおよびDは、987-15を示す。EおよびFは、987-17を示す。A、CおよびEは筒状花を示す。B、DおよびFは舌状花を示す。GUS活性が高い組織は青く染色されている。図3は、GUS染色を示す。図3において、AおよびBは野生型を示す。CおよびDは、987-15を示す。AおよびCは葉を示す。BおよびDは茎を示す。図4は、各組織でのGUS遺伝子の発現を示す。WTは野生型を示し、987-15は組換え体を示す。左から雄ずい、雌ずい、舌状花の花弁、筒状花の花弁、葉、根を示す。組換え体の雄ずいにおいて他の組織に比べ100倍以上の発現が見られるこれらの結果から、本発明のプロモーターは、雄ずいにおいて特異的な100倍以上の発現の発現を誘導しうることが実証された。実施例3:不稔化実験本実施例では、本発明を用いてキクを雄性不稔化させる実験を行う。TOMSSFのプロモーター含有核酸の下流に細胞死を起こす遺伝子、RNA分解酵素をコードする遺伝子、減数分裂に関与する遺伝子、形態形成に関する遺伝子Barnase遺伝子Marianietal.1990Nature347:737741.またはbarstar遺伝子Hartley,1988JMolBiol.202:913-915。Barnase遺伝子accessionnumberM14442atgaaaaaacgattatcgtggatttccgtttgtttactggtgcttgtctccgcggcggggatgctgttttcaacagctgccaaaacggaaacatcttctcacaaggcacacacagaagcacaggttatcaacacgtttgacggggttgcggattatcttcagacatatcataagctacctgataattacattacaaaatcagaagcacaagccctcggctgggtggcatcaaaagggaaccttgcagacgtcgctccggggaaaagcatcggcggagacatcttctcaaacagggaaggcaaactcccgggcaaaagcggacgaacatggcgtgaagcggatattaactatacatcaggcttcagaaattcagaccggattctttactcaagcgactggctgatttacaaaacaacggaccattatcagacctttacaaaaatcagataa配列番号6Barstar遺伝子accessionnumberX15545atgaaaaaagcagtcattaacggggaacaaatcagaagtatcagcgacctccaccagacattgaaaaaggagcttgcccttccggaatactacggtgaaaacctggacgctttatgggattgtctgaccggatgggtggagtacccgctcgttttggaatggaggcagtttgaacaaagcaagcagctgactgaaaatggcgccgagagtgtgcttcaggttttccgtgaagcgaaagcggaaggctgcgacatcaccatcatactttcttaa配列番号7等を組み込んだバイナリーベクターを作成する。このベクターをキクの形質転換のプロトコールに従い組換え体を作出する。具体的には、実施例2に準じて行なうことができる。実施例4:花形の改変実験本実施例では、本発明のシステムを用いて、これらの遺伝子が働いた場合、雄ずいが消失する、または異なる形態を示すことになり、花型の改変が可能であることを実証する。具体的には、Aidaetal.2008PlantBiotechnology25:55-59.で行われている方法を利用し、この論文中で利用されているバイナリーベクターのtobaccoelongationfactor-1αプロモーターを本発明のプロモーター含有配列TOMSSFに置き換えることにより行う。このベクターを遺伝子導入することによりキクのAGAMOUSECAG遺伝子の雄ずいにおける発現が変化する。その結果、舌状花、筒状花管状花の雄ずいおよび雌ずいの欠失あるいは花冠様組織への変化が起こると期待される。以上のように、本発明の好ましい実施形態を用いて本発明を例示してきたが、本発明は、特許請求の範囲によってのみその範囲が解釈されるべきであることが理解される。本明細書において引用した特許、特許出願および文献は、その内容自体が具体的に本明細書に記載されているのと同様にその内容が本明細書に対する参考として援用されるべきであることが理解される。"