"以下の式1又は4で示される化合物。請求項1記載の式1又は4で示される化合物を含有することを特徴とする皮膚外用剤。化粧品である請求項2記載の皮膚外用剤。美白剤である請求項2記載の皮膚外用剤。肌の老化防止剤である請求項2記載の皮膚外用剤。椿花抽出物を含有することを特徴とする皮膚外用剤。椿花抽出物が式1又は4で示される化合物を含有することを特徴とする請求項6記載の皮膚外用剤。式1又は4で示される化合物が配合されている請求項6記載の皮膚外用剤。式1又は4で示される化合物を配合する工程を含んでなる皮膚外用剤の製造方法。請求項2から請求項8のいずれか一項に記載の皮膚外用剤の非臨床的使用。以下の式1~5で表される化合物のいずれかを含有する皮膚外用剤。近年の社会生活の複雑化によってもたらされる精神的、肉体的ストレスが皮膚などへも蓄積されており、従来技術では、十分な原状、健康回復を行うことができない問題を有している。すなわち、従来の製剤中の安定性が不十分であったり、アレルギー、皮膚刺激性等、皮膚の安全性の面で問題があったり、効果が不十分であったりして、必ずしも、満足する美白剤はなく、より有効な美白剤が求められている。さらには、美白以外の効果例えば肌の老化防止効果も有している原料が期待されている。本発明の目的は、前述した不利益を回避した、目的の効果を有する新規物質並びにその類縁体、および当該新規物質並びにその類縁体を含有する抽出物、ならびに、それらの皮膚外用剤としての用途、その製造方法、およびその使用を提供することを目的とする。本発明者らは、上記のような事情に鑑み、肌の美白作用が強くさらに、その他の効果を持ち、安全性や安定性に優れた皮膚外用剤の成分を鋭意検討した結果、驚くべきことに、椿花の抽出物が、肌の美白作用および肌の老化防止効果を有することを見出した。また、その成分を単離したところ、新規なカメリオサイド式1、式4を含むカメリオサイド類を見出した。以下に詳述する。椿花の抽出物の培養メラノーマ細胞におけるメラニン生成抑制作用、線維芽細胞の増殖作用および肌の老化に関連する酵素活性に及ぼす影響を検討した。肌の老化に関連する酵素活性としては、マッシュルーム由来チロシナゼ、ヒストリチクス菌Clostridiumhistolyticum由来コラゲナーゼI型、ウシ睾丸由来ヒアルロニダーゼ、ブタ膵臓由来エラスターゼを用いた。その結果、椿花抽出物はいずれの実験系においても有効性を示した。したがって、メラニンの生成を抑える作用は、肌の美白作用効果があり、線維芽細胞の増殖作用および肌の老化に関連する酵素活性を抑えることは、肌の老化防止に効果がある。さらに産地京都産、五島産、韓国済州島による効果の違いも検討したが、大きな差は見られず、椿花エキスに普遍的な効果であることが明らかとなった。本発明者らは、ここに、椿花抽出物およびその成分が肌の美白作用および肌の老化防止効果を有するという技術思想を確立し、本発明を完成した。本発明は、[1]以下の式1又は4で示される化合物;[2][1]記載の式1又は4で示される化合物を含有することを特徴とする皮膚外用剤;[3]化粧品である[2]記載の皮膚外用剤;[4]美白剤である[2]記載の皮膚外用剤;[5]肌の老化防止剤である[2]記載の皮膚外用剤;[6]椿花抽出物を含有することを特徴とする皮膚外用剤;[7]椿花抽出物が式1又は4で示される化合物を含有することを特徴とする[6]記載の皮膚外用剤;[8]式1又は4で示される化合物が配合されている[6]記載の皮膚外用剤;[9]式1又は4で示される化合物を配合する工程を含んでなる皮膚外用剤の製造方法;[10][2]~[8]のいずれか一項に記載の皮膚外用剤の非臨床的使用;および[11]以下の式1~5で表される化合物のいずれかを含有する皮膚外用剤;を開示するものである。カメリオサイド類は、塩が形成できる場合は薬学上許容されるその塩を含む。また、光学異性体およびそれらの異性体の混合物、溶媒和物、結晶多型などを含む。さらに、1個以上の原子が、自然界にて通常見られる原子質量または質量数とは異なる原子質量または質量数を有する原子と置き換えられたこと以外は本明細書に記載されたものと同一である同位体標識化合物を含む。本発明の化合物に組み込まれ得る同位体としては、水素、炭素、窒素、酸素、リン、フッ素、ヨウ素および塩素の同位体が挙げられ、例えば、2H、3H、11C、14C、18F、123Iおよび125Iが挙げられる。上記同位体および/または他の原子の他の同位体を含有する本発明の化合物も、本発明の範囲内である。本発明の椿花抽出物を得るために用いることができる植物の花は、ツバキ科Theaceaeに属する植物の花であれば特に限定されるものではなく、例えば、ヤブツバキ、ユキツバキ、ホンコンツバキ、サルウィンツバキ、ヤクシマツバキ、トウツバキ、ウラクツバキ、ワビスケ、カンツバキ、ナツツバキ、岩根絞、春曙光、太郎冠者等の種々の品種の花が挙げられる。なかでも、ヤブツバキCamelliaJaponicaLの花が好ましい。これらの植物は、日本、アジア等に広く生育しているものであり、どこに生育しているものでも使用することができる。なお、ツバキ科植物の花としては、単種または複数種のツバキ科植物の花のいずれを使用してもよい。ツバキ科植物の花は、通常、ガク片、花弁、心皮、雄ずい、雌ずい等を含むもので、かつ新鮮なものであることが好ましい。抽出する溶媒としては、例えば、水、低級アルコール類メタノール、エタノール、1-プロパノール、2-プロパノール、1-ブタノール、2-ブタノール等、液状多価アルコール1,3-ブチレングリコール、プロピレングリコール、グリセリン等、ケトン類アセトン、メチルエチルケトン等、アセトニトリル、エステル類酢酸エチル、酢酸ブチル等、炭化水素類ヘキサン、ヘプタン、流動パラフィン等、エーテル類エチルエーテル、テトラヒドロフラン、プロピルエーテル等が挙げられる。好ましくは、水、低級アルコールおよび液状多価アルコール等の極性溶媒が良く、特に好ましくは、水、エタノール、1,3-ブチレングリコールおよびプロピレングリコールが良い。これらの溶媒は一種でも二種以上を混合して用いても良い。上記抽出物は、抽出した溶液のまま用いても良く、必要に応じて、濃縮、希釈および濾過処理、活性炭等による脱色、脱臭処理等をして用いても良い。更には、抽出した溶液を濃縮乾固、噴霧乾燥、凍結乾燥等の処理を行い、乾燥物として用いても良い。本発明の皮膚外用剤には、上記抽出物をそのまま使用しても良く、また、別途に単離または合成した1つまたはそれ以上のカメリオサイド類を加えて使用してもよい。また、抽出物の効果を損なわない範囲内で、外用剤に用いられる成分である油脂類、ロウ類、炭化水素類、脂肪酸類、アルコール類、エステル類、界面活性剤、金属石鹸、pH調整剤、防腐剤、香料、保湿剤、粉体、紫外線吸収剤、増粘剤、色素、酸化防止剤、美白剤、キレート剤等の成分を配合することができる。本発明の皮膚外用剤は、化粧品、医薬部外品、医薬品のいずれにも用いることができ、その剤形としては、例えば、化粧水、クリ-ム、乳液、ゲル剤、エアゾール剤、エッセンス、パック、洗浄剤、浴用剤、ファンデ-ション、打粉、口紅、軟膏、パップ剤等の頭皮を含む皮膚に適用されるものが挙げられる。本発明に用いる上記抽出物の配合量は、本発明の皮膚外用剤全量に対し、固形物に換算して0.0001重量以上、好ましくは0.001~10重量の配合が良い。0.0001重量未満では十分な効果は望みにくい。10重量を越えて配合した場合、効果の増強は認められにくく不経済である。また、添加の方法については、予め加えておいても、製造途中で添加しても良く、作業性を考えて適宜選択すれば良い。本発明で使用される水性アルコールとしては、炭素数1~3の脂肪族アルコールが挙げられ、例えば、メタノール、エタノール、プロパノール等が挙げられる。なかでも、メタノールや水性アルコール水溶液として、1~50重量程度の水性アルコールを含有する水溶液が好ましい。本発明によれば、ツバキ科植物の花を水性アルコールまたは水性アルコール水溶液により抽出し、椿花抽出物を得る。この際、水性アルコール等は、ツバキ科植物の花の1~10倍重量程度、好ましくは1~5倍程度使用することが適当である。また、抽出は、冷浸または温浸のいずれで行ってもよいが、50~85°C程度の温度で、振盪下または非振盪下に、上述したツバキ科植物の花を上述した溶剤に浸漬することによって行うことが適当である。振盪下に浸漬する場合には、30分間~5時間程度行うことが適当であり、非振盪下に浸漬する場合は、1時間~10日間程度行うことが適当である。なお、抽出処理は、同一椿花材料について1回のみ行ってもよいが、2回以上繰り返して行うことが好ましい。得られた抽出物は、精製処理に付してもよい。精製処理は、クロマトグラフ法、イオン交換樹脂を使用する溶離法等を単独または組み合わせて採用することができる。例えば、クロマトグラフ法としては、順相クロマトグラフィー、逆相クロマトグラフィー、高速液体クロマトグラフィー、遠心液体クロマトグラフィー、カラムクロマトグラフィー、薄層クロマトグラフィー等のいずれかまたはそれらを組み合わせて行う方法が挙げられる。この際の担体、溶出溶媒等の精製条件は、各種クロマトグラフィーに対応して適宜選択することができる。例えば、薄層クロマトグラフィーの場合には、水―メタノール系の溶媒、高速液体クロマトグラフィーの場合にはメタノール-酢酸系の溶媒等を使用することができる。上記で得られた水性アルコール特に、メタノール抽出物またはn-ブタノール抽出物を順相および逆相薄層クロマトグラフィーに付し、さらに高速液体クロマトグラフィーに付した場合、実施例に示す式1~式4の化合物に対応するスポットおよびピークを得ることができる。このように、本発明の椿花抽出物は、最終的に得られたピークを示す成分を精製することにより、式1~式4の化合物を単離することができる。椿花の抽出物、および、それから単離された新規なカメリオサイド式1、式4を含むカメリオサイド類は、肌にある有害な酵素マトリックスメタロプロテアーゼ、トリプシン、キモトリプシン、ヒアルロニダーゼ、リパーゼ、およびチロシナーゼ等の阻害作用を有し、美白効果および肌の老化防止効果を示す。以下、本発明の椿花抽出物、そこに含有される新規化合物およびその類縁体の作用についての実施例を具体的に説明するが、これらは本発明を限定するものではない。成分の単離方法椿花の抽出方法の概要を図1に示す。韓国済州島で採取し、乾燥した椿花CamelliaJaponicaL1002.7gをメタノール99.910リットルに浸漬し、80°Cの加温下、2時間抽出した。これを2回繰り返し、得られたメタノールを合液し、メタノールを蒸発させることにより、メタノール抽出物を得た444g。同様に京都産、五島産椿花についてもメタール抽出物を得た収率46.2、46.0。また、済州島産椿花については50エタノール抽出物を上記の方法に準じて作成した収率30.0。次いで、得られたメタノール抽出物444gに、室温下、酢酸エチルおよび水1:1を8リットルずつ加えて振り混ぜ、得られた酢酸エチル層および水層をそれぞれ分液採取した。この操作を6回繰り返した。さらに、得られた水層に、室温下、含水n-ブタノールを8リットル加えて振り混ぜ、得られた含水n-ブタノール層および水層をそれぞれ分液採取した。この操作を6回繰り返した。酢酸エチル層、含水n-ブタノール層および水層から溶媒を蒸発させることにより、酢酸エチル分画、含水n-ブタノール分画および水分画を、それぞれ得た21g、138gおよび278g。続いて、得られたn-ブタノール抽出物を、SiO2カラムを用いた薄層クロマトグラフィーにより、分離状態を確認しながら、移動相としてCHCl3-メタノール-7:3でフラクション1から4を、CHCl3-メタノール-水7:3:0.5でフラクション5、CHCl3-メタノール-水6:4:1でフラクション8から11、メタノールで12のフラクションを得た。得られた12のフラクションのうち、フラクション6として得られた分画を、さらにODSカラムを用いた薄層クロマトグラフィーにより、分離状態を確認しながら、移動相としてメタノール30、40-50、50、60、65、70、80、90、100と組成比を順次切り替えて分離し、9のフラクションを得た。得られた9のフラクションのうち、フラクション4として得られた分画を、液体クロマトグラフ装置島津製作所製:HPLC装置、送液ポンプ:LC-10AS、示差屈折計:RID-6A、YMC-PACODSカラム、流速:2mL/分と、移動相として70メタノール1水溶液-酢酸とを用いて、4つのフラクションに分離し、式1762mgおよび式2589mg、式394mgの化合物をそれぞれ得た。また、フラクション5として得られた分画を、液体クロマトグラフ装置島津製作所製:HPLC装置、送液ポンプ:LC-10AS、示差屈折計:RID-6A、YMC-PACODSカラム、流速:2ml/分と、移動相として70メタノール1水溶液-酢酸とを用いて、4つのフラクションに分離し、上記式21489mg及び式31500mgの化合物をそれぞれ得た。さらに、フラクション6として得られた分画を、液体クロマトグラフ装置島津製作所製:HPLC装置、送液ポンプ:LC-10AS、示差屈折計:RID-6A、YMC-PACODSカラム、流速:2ml/分と、移動相として80メタノール1水溶液-酢酸とを用いて、6につのフラクションに分離し、上記式4120mgを得た。なお、式1、2、3、および4の各化合物の構造は、NMR法により、それぞれ決定した。また、大島産椿花から分取されている式5についても検討した。構造式を以下に示す。また、各化合物のHPLCのチャートをそれぞれ図2~図4に示す。培養メラノサイト細胞におけるメラニン生成に及ぼす作用[方法]マウス由来メラノサイト細胞B16-4A55×104個/mLをD-MEM4500mgグルコース、10FBS、ペニシリン100U/mL、ストレプトマイシン100μL/mL、アンホテリシンB0.25mg/mLに懸濁し、24穴プレートに400μLずつ播種した。CO2インキュベーターで24時間培養後、培地を吸引除去し、被検体をDMSOに溶解後、D-MEMで希釈最終DMSO濃度0.1した培地400mL添加、さらに、1mMtheophiline100mLを加え、CO2インキュベーターで培養を開始した。72時間後、PBSで2回洗浄後、トリプシンを100μL加え、細胞を剥離し、D-MEMで回収した。回収した細胞を2000G、5分間遠心分離し、PBSで2回洗浄後、1.0MNaOH120μLを加え、80°C、50分間加熱して細胞を溶解し、405nm、参考波長655nmにおける2点吸光度を測定した。また、D-MEM中、メラノサイト細胞B16-4A55×104個/mLを96穴プレートに100μLずつ播種し、24時間培養後、被検体を含む培地100mLに交換し、さらに72時間培養後、kit-8を用いて細胞数を検討した。[結果]表1に示すように、椿花の抽出物は、いずれの産地においても強いメラニン生成抑制作用を示した。この作用は、美白化粧品に有効成分として配合されているアルブチンよりも強く有用性の高いことが明らかになった。また、この活性は脂溶性分画に強く、単離された化合物の中では式2、4、5に抑制作用が認められ、その作用はアルブチンの100倍以上であった。※アルブチン800μgmLは、約2400μMに相当する。また、これらの化合物はメラノサイト細胞の増殖を抑制しており、これがメラニン生成抑制の作用機序の一つであると考えられた。チロシナーゼ酵素活性に及ぼす作用[方法]チロシナーゼ酵素抑制効果は、ドーパからドーパキノンへの変換について行った。即ち、リン酸緩衝液pH6.0に溶解した被検体0.5mLにL-DOPA300μg/mL0.5mLを加え25°C、10分間プレインキュベートの後、45μg/mL241.7U/mLのチロシナーゼ0.5mLを添加して、25°C、5分間インキュベートの後、475nmの吸光度を測定した。被検体はDMSOに溶解後、リン酸緩衝液で希釈した最終DMSO濃度0.1。[結果]表2に示すように、メラニン生成抑制の作用機序の一つであるチロシナーゼ酵素を各産地の椿花抽出物に抑制する作用のあることが明らかになった。この作用は、既に美白成分として用いられるアルブチンに比して2倍から4倍の作用があり、有効性の高いことが示された。また、酢酸エチル分画に強い抑制作用が認められた。線維芽細胞増殖に及ぼす作用[方法]ヒト新生児線維芽細胞NB1RGB、TOYOBO5×105個/mLをD-MEM10FBS、ペニシリン100U/mL、ストレプトマイシン100μL/mL、アンホテリシンB0.25mg/mLに懸濁し、96穴プレートに100μLずつ播種した。被検体はDMSOに溶解後DMSOの最終濃度は0.1、D-MEMで希釈し、100μL添加した。被検体を添加後、CO2インキュベーターで48時間培養後、PBSで2回洗浄し、細胞数の測定を下記の方法で行った。Kit-8法同仁化学研究所:PBSで洗浄後、D-MEM100μLおよびKit-8試薬を10μL加え、1時間培養後450nmと655nmにおける2点吸光度を測定した。蛋白質定量法:PBSで洗浄後、蒸留水50μL加え、凍結と溶解を3回繰り返して細胞を割り、蛋白定量キットタカラバイオの試薬を150μL加え30分後、570nmにおける吸光度を測定した。[結果]表3に示すように、線維芽細胞増殖に対して各産地の椿花抽出物はいずれも増殖を促進する作用を示した。細胞数の検討方法としてKit8を用いる方法と蛋白質を定量する二つの方法で行ったが、いずれの方法においても同様の結果が得られた。椿花から単離された化合物でも同様に線維芽細胞の増殖を促進する作用を示した。式2、4、5ではメラノサイト細胞の増殖を抑制する作用が認められたが、肌の構成に強い影響のある線維芽細胞に対しては増加させる効果を示しており、化粧品原料としての有用性を示した。VCPMg:アスコルビン酸リン酸エステルマグネシウム塩コラゲナーゼ酵素活性に及ぼす作用[方法]各濃度の試料溶液50μL最終濃度0.1のDMSOを含むに酵素液として0.5mg/mLのコラゲナーゼI型SIGMA溶液を50μL加えた。基質溶液として0.39mg/mLの4-フェニルアゾベンジルオキシカルボニル-Pro-Leu-Gly-Pro-d-Arg-OH二水和物、SIGMA50μLを加えて混合し、37°C、30分間反応させた後、1mLの25mMクエン酸を加えて反応を停止させた。2mLの酢酸エチルを加えて抽出して、酢酸エチル層の吸光度を320nmで測定した。なお、試料、コラゲナーゼ、基質は20mM塩化カルシウム入りトリス塩酸緩衝液pH7.1に溶解した。また、各試料の阻害作用は、次の式から求められる阻害率で算出した。なお、対照には試料の代わりに精製水を用い、ブランクとしてコラゲナーゼの代わりに20mM塩化カルシウム入りトリス塩酸緩衝液pH7.1を用いた。阻害率=1-C-D/A-B×100A:対照の320nmにおける吸光度OD320B:対照ブランクのOD320C:試料のOD320D:試料ブランクのOD320[結果]表4に示すように、各産地の椿花抽出物は、コラゲナーゼ酵素の活性を抑制した。その作用は、水分画の活性が比較的低く、脂溶性分画に強い活性が認められた。エラスターゼ酵素活性に及ぼす影響[方法]基質溶液として2mmol/mLのN-サクシニル-Ala-Ala-Ala-p-ニトロアニリド100μLに各濃度の試料溶液50μL最終濃度0.1のDMSOを含むを加え、0.05単位/mLの豚膵臓由来のエアラスターゼ酵素液50μLを加え、37°C、30分反応させた後、450nmの吸光度を測定し、生成したニトロアニリン量を求め、エラスターゼ活性抑制率を算出した。なお、基質、試料、エラスターゼは0.05mol/LTris-HCLpH8.8緩衝液で溶解した。エラスターゼ活性抑制率は以下の式により算出した。エラスターゼ活性抑制率={1-A-B/C-D}×100A:基質液と試料溶液とを混合した後、酵素液を添加した時の混合液の波長405nmの吸光度B:基質液と試料溶液とを混合した時の混合液の波長405nmの吸光度C:試料溶液の代わりに、該溶液の溶媒を基質液と上記割合で混合した後、酵素液を添加した時の混合液の波長405nmの吸光度D:試料溶液も酵素液も添加していない、基質液の波長405nmの吸光度[結果]表5に示すように、各産地の椿花抽出物には、エラスターゼ酵素の活性を抑制する作用が認められた。溶媒分画では、ブタノール分画の抑制活性がやや弱かったものの、活性は各分画に分散していた。ヒアルロニダーゼ酵素活性に及ぼす影響[方法]ヒアルロニダーゼ阻害活性試験は、Morgan-Elson法に準じて実施した。100mM酢酸緩衝液pH3.5に溶解した試料溶液100μLにヒアルロニダーゼSIGMA34ユニットを添加し、37°Cで20分間予備加温した。同緩衝液に溶解した0.05wvCompound48/80ナカライテスク社製および25mM塩化カルシウム溶液を100μL加えて、37°Cで20分間インキュベートしてヒアルロニダーゼを活性化させた。この溶液に2mg/mLのヒアルロン酸カリウム溶液100μLを加え、37°Cで40分反応させた後、0.4NNaOHを100μL加え、0.5NKOHに溶解した0.8Mホウ酸溶液を100μL反応液に加え、100°Cで3分間加温した後、氷冷した。この溶液にpジメチルアミノベンズアルデヒド試薬を3mL加え、37°Cで20分間反応させた後、585nmの吸光度を測定した。ヒアルロニダーゼ阻害活性は次式により求めた。ヒアルロニダーゼ阻害活性={[A-B-C-D]/A-B}×100A:試料を添加していない反応液の吸光度コントロールB:酵素を添加していない反応液の吸光度ブランクC:試料を添加した反応液の吸光度D:試料、酵素を添加していない反応液の吸光度試料ブランク[結果]表6に示すように、各産地の椿花抽出物にヒアルロニダーゼ酵素を抑制する作用が認められた。また、水分画にこの活性は全く認めらえず、脂溶性の分画に活性が集中し、そこから単離された化合物4、5に強い抑制作用が認められた。特に化合物4の活性は5μMの用量で89の抑制率を示した。キモトリプシン酵素活性に及ぼす影響[方法]N-サクシニル-1-フェニルアラニン-p-ニトロアニリド100μL最終濃度0.1mMを加え、各濃度の試料溶液50μL、キモトリプシン和光純薬工業株1mg/mLを50μL加え、37°Cで1時間インキュベートし、405nmの吸光度を測定して、酵素活性を測定した。なお、試料、キモトリプシン、基質は0.05Mトリス塩酸緩衝液pH7.5に溶解した。また、各試料の阻害作用は、次の式から求められる阻害率で算出した。阻害率=1-C-D/A-B×100A:対照の吸光度B:対照ブランクの吸光度C:試料の吸光度D:試料ブランクの吸光度[結果]表7に示すように、キモトリプシン酵素に対して、各産地の椿花抽出物は抑制効果を示した。トリプシン酵素活性に及ぼす影響[方法]N-サクシニル-Ala-Ala-Ala-p-ニトロアニリド100μL最終濃度0.1mMを加え、各濃度の試料溶液50μL、トリプシン和光純薬工業株1mg/mLを50μL加え、37°Cで1時間インキュベートし、405nmの吸光度を測定して、酵素活性を測定した。なお、試料、コラゲナーゼ、基質は0.05Mトリス塩酸緩衝液pH7.5に溶解した。また、各試料の阻害作用は、次の式から求められる阻害率で算出した。阻害率=1-C-D/A-B×100A:対照の吸光度B:対照ブランクの吸光度C:試料の吸光度D:試料ブランクの吸光度[結果]表8に示すように、トリプシン酵素に対して、各産地の椿花抽出物は抑制効果を示した。リパーゼ酵素活性に及ぼす影響[方法]トリオレイン80mg、ホスファチジルコリン10mg、タウロコール酸ナトリウム5mgを0.1MNaClを含む0.1Mトリス塩酸緩衝液pH7.09mLに懸濁した基質溶液0.1mLに各濃度の試料溶液を0.1mL加えて、37°Cで3分間インキュベートし、250μg/mLの牛膵臓由来リパーゼSIGMA0.05mLを加えて、37°C、30分間インキュベートした。その後、100°Cで2分間加熱した後、氷冷し、遊離した脂肪酸量を遊離脂肪酸測定キットNEFAC-test、Wakoを使って測定し、リパーゼの活性を算出した。なお、各試料の阻害作用は、次の式から求められる阻害率で算出した。阻害率=1-C-D/A-B×100A:対照の吸光度B:対照ブランクの吸光度C:試料の吸光度D:試料ブランクの吸光度[結果]表9に示すように、リパーゼ酵素に対して、各産地の椿花抽出物は抑制効果を示した。各産地の椿花抽出物はいずれも、肌の老化を進める酵素の活性を抑制し、肌老化を防止する作用が椿花に共通する作用として認められた。また、数種の酵素活性を椿花抽出物が抑制することは、それぞれの酵素を抑制するために、個々の酵素を抑制する化合物や植物抽出物などをそれぞれ配合する必要がなく、椿花抽出物のみの配合で効果が期待出来、皮膚外用剤を製造する上で非常に有利である。"