"表面11上の生物学的粒子のクラスター12を検出する方法であって、a前記表面のトポグラフィー表現20を決定するステップE1、およびb前記トポグラフィー表現において、生物学的粒子のクラスターに潜在的に対応する領域を画定する少なくとも1つの輪郭を検出するステップE3、E4を含み、これらのステップは、電子データプロセッサー手段を利用して実行される、方法。前記生物学的粒子が、細菌、酵母または真菌等の微生物、および植物または動物細胞から選択される、請求項1に記載の方法。前記生物学的粒子が、100μm以下の直径または主要寸法を示す、請求項1または2に記載の方法。前記表面11が、培養培地と空気等の周囲媒体との間の界面、機能化基板の表面、および微多孔膜の表面から選択される、請求項1から3のいずれか一項に記載の方法。前記表面のトポグラフィー表現を決定することにある前記ステップaが、接触なしに、および試料調製なしに行われる光学的方法により実行される、請求項1から4のいずれか一項に記載の方法。前記表面のトポグラフィー表現を決定することにある前記ステップaが、色共焦点マイクロトポグラフィーにより実行される、請求項5に記載の方法。前記構造のトポグラフィー表現を決定することにある前記ステップaが、シュリーレン写真またはオンブロスコピーにより実行される、請求項5に記載の方法。少なくとも1つの輪郭を検出することにある前記ステップbが、表面の前記トポグラフィー表現の局所的勾配を測定して閾値化することにより実行される、請求項1から7のいずれか一項に記載の方法。前記トポグラフィー表現を前処理する操作E2も含み、前処理操作は、基準表面を検出するステップと、基準表面を差し引くステップとを含む、請求項1から8のいずれか一項に記載の方法。連続した時間で、ステップaおよびbを反復するステップと、ステップbにおいて特定される、経時的に変化する形状またはサイズを有する領域のみを選択するステップとを含む、請求項1から9のいずれか一項に記載の方法。クラスター内に存在する生物学的粒子の量を評価することにある追加的ステップcを含む、請求項1から10のいずれか一項に記載の方法。クラスター内に配置された微生物のinsituまたはexsitu同定の追加的ステップを含む、請求項2から11のいずれか一項に記載の方法。本発明は、微生物のコロニー等の小さい寸法のクラスターの、その成長の開始時における早期検出の達成を可能とする、可能な限り少なく含まれる生物学的粒子の培地を検出する方法を提供することにより、上述の欠点を軽減することを目的とする。本発明によれば、そのような目的は、表面上の生物学的粒子のクラスターを検出する方法であって、a前記表面のトポグラフィー表現を決定するステップ、およびb前記トポグラフィー表現において、生物学的粒子のクラスターに潜在的に対応する領域を画定する少なくとも1つの輪郭を検出するステップを含む方法により達成される。これらのステップは、特にステップaを実行するための適切な測定デバイスと関連して、好適にプログラムされたコンピューターまたは他の電子データプロセッサー手段を使用して実行される。本発明の有利な実行例において、前記生物学的粒子は、細菌、酵母または真菌等の微生物、および植物または動物細胞から選択され得る。前記生物学的粒子は、10μmから3mm、または好ましくは100μmを含む数百μm以下、例えば100μm以下の範囲にある直径または主要寸法を示してもよい。前記表面は、培養培地と空気等の周囲媒体との間の界面、機能化基板の表面、および微多孔膜の表面から選択され得る。前記表面のトポグラフィー表現を決定することにある前記ステップaは、侵害を最小限とすることを保証するために、接触なしに、および試料調製なしに行われる光学的方法により実行され得る。特に、光学的方法は、色共焦点マイクロトポグラフィー、またはシュリーレン写真もしくはオンブロスコピーの方法により構成され得る。少なくとも1つの輪郭を検出することにある前記ステップbは、表面の前記トポグラフィー表現の局所的勾配を測定して閾値化することにより実行され得る。本方法はまた、前記トポグラフィー表現を前処理する操作を含んでもよく、前処理操作は、基準表面を検出するステップと、基準表面を差し引くステップとを含む。本方法は、連続した時間で、ステップaおよびbを反復するステップと、ステップbにおいて特定される、経時的に変化する形状またはサイズを有する領域のみを選択するステップとを含み得る。本発明の有利な変形例において、本方法は、検出されたクラスターのサイズ、例えばその体積に関連する指標を定量化することにある追加的ステップcを含み得る。これは、問題となる生物学的粒子の平均サイズが既知である場合に特に有利である。そのような状況下では、このステップcにより、クラスター内に存在する生物学的粒子の量を評価することができる。対象となる生物学的粒子の平均サイズを知っているため、個々に考えて、クラスターのサイズが決定されれば、前記クラスター内に存在する生物学的粒子の数を定量することは容易である。本発明のそのような変形例は、生物学的粒子が微生物であり、前記微生物のその後の処理が想定される場合に特に有利であり、この場合コロニーから試料を採取する必要がある。したがって、この変形例により、例えば試料を採取する前に、存在する微生物の量が十分であることを確証することができる。本発明の有利な変形例において、方法は、クラスター内に配置された微生物のinsituまたはexsitu同定の追加的ステップを含み得る。本発明の他の特徴、詳細、および利点は、例示のために示される添付の図面を参照してなされる以下の説明を読むことで明らかになる。図1は、ペトリ皿10の平面図を示し、皿は、表面11上に成長した細菌12のコロニーを有する栄養培地ゲロースを含有する。本発明の方法は、これらのコロニーが肉眼に見えない程非常に小さい直径数十マイクロメートル、例えば30μm以下の直径を有する、その成長の初期段階において、これらのコロニーを検出することを目的とする。培養培地の表面11すなわちゲロース-空気界面は、ゲロースの表面状態に関連した不規則性13を示す。図1の例において、ゲロースは、空気に直接露出しており、結果として乾燥する傾向にあり、それにより、その表面の変質、特にその平均レベルの変動がもたらされる。有利には、ゲロース表面上の生物学的粒子のクラスターを検出する方法は、これらの表面不規則性、および表面が受ける変質を考慮する。本発明の方法は、栄養培地の表面での細菌の増殖が隆起を形成するという既知の事実を利用する。コロニーの成長の初期段階中のこの隆起の高さは、数百ナノメートル規模、またはマイクロメートル規模である。本発明の基礎となる考えは、適切な画像処理に関連した既知の表面トポグラフィー技術を使用して、生物学的粒子のクラスターに関連した隆起を検出することにある。図2に示されるように、本発明の方法の第1のステップE1は、検出されるクラスター12がその上で成長している表面11のトポグラフィー表現20を決定することにある。この図に示される例において、トポグラフィー表現は3次元であり、具体的には、トポグラフィー表現は3次元シートの形態である。表面の各点は、Oxy面内の座標x,yを有し、3次元トポグラフィー表現において、好ましくはOxy面に垂直な軸Ozに沿ったz座標に関連している。この表現は、基準のOx、Oy、Oz枠内の3次元表面の形態、または、要素ai,jがOxy面内の座標i,jを有する点のz軸に沿った高さに対応する行列の形態であってもよい。第2のステップE2は、トポグラフィー表現20を前処理する操作であり、この操作は、ベース表面を検出して差し引くステップを含む。上で説明されたように、表面11は明確に画定されない可能性があり、さらには経時的に変動する可能性がある。粒子のクラスターの良好な検出を確実とするために、適切なデータ処理、例えば、典型的にはマイクロメートル当たり約0.001μm-1、例えば1/2000μm-1から1/500μm-1の範囲にあるカットオフ周波数でのローパス空間フィルタリングにより抽出されるベース表面を決定する必要がある。培養培地の調製による傷、厚さの変動、さらには不均一な変動、および平面性からの逸脱は、全て消失する。より単純な変形例において、平面で傾いたベース表面を決定するために、表面の領域の周辺において平均勾配が計算される。参照番号21は、フィルタリングされた3次元シートより一般的には、トポグラフィー表現を指し、低い空間周波数の不規則性201例えば培養培地13の不規則性に起因するは、上述の処理操作により排除されている。シート21上に残留するものは全て、十分に小さいサイズの、および/または十分に高い空間周波数を含む不規則性および粗さ202である。空間周波数の高いという用語は、1/500μm-1を超える周波数を意味するように使用される。非常に高い周波数の成分、すなわち数μm-1を超える空間周波数に対応する成分を排除することが可能であり、そのような成分は、培養培地を構成するゲルの粗さに対応する。第3のステップE3は、3次元シート21から輪郭22を抽出することにある。既知の様式で、輪郭は、シートの局所的勾配の測定、続いて閾値化、または帯域通過空間フィルタリングによって、当業者に知られている輪郭検出器フィルタにより、例えば数/500μm-1から数/10μm-1の範囲にある通過帯域を有するフィルタにより検出され得る。輪郭22の少なくともいくつかは、第4のステップE4において、生物学的粒子のクラスターに対応し得るものとして特定される閉領域23を画定する。ステップE4は、考慮される閉領域を選択する操作を含み得る。例えば、選択基準を適用することができ、それにより、十分に小さい寸法数十マイクロメートル規模の対角線または直径の領域のみが、潜在的に生物学的粒子のクラスターを表すものとして維持される。変形例または組合せにおいて、連続した時間で、ステップE1~E4を反復することができ、また経時的に変動する形状またはサイズを有する領域22のみを選択することができる。生物学的粒子のクラスターは、経時的に変化する生きた構造であり、一方非生物学的構造は、たとえあるとしても、2つの連続した測定の間にほとんど変化しない。また、これによって、クラスターの成長速度を測定することができる。検出されるクラスターがその上で成長する表面のトポグラフィー表現を決定することにある方法の第1のステップE1は、それ自体知られている様々な異なるマイクロトポグラフィー技術を適用することにより実行され得る。検出されるクラスターの成長の妨害を回避するために、接触を必要としない技術、具体的には、試料調製を必要としないすなわち、染料、フルオロフォア、またはその前駆体の使用によらない光学的技術を使用することが特に好ましい。一般に、光学的マイクロトポグラフィー技術は、光源を使用して、3次元表現が得られる表面を照らすこと、光センサを使用して、表面により反射または透過された光に対応する信号を検出すること、および、検出された信号から、表面の3次元トポグラフィー表現を決定することを含む。表面の照明は、周囲媒体から表面に向けて方向付けられてもよい。照明が平行化されていない場合、測定されるゾーン上に集光されてもよい。光源は、空間および/もしくは時間干渉性であってもよく、または非干渉性であってもよい。光源は、多色または単色であってもよい。検出は、相補型金属酸化物-シリコンCMOS、電荷結合素子CCD、光電子増倍管、フォトダイオード等の種類の1次元画像センサストリップまたは2次元画像センサマトリックスにより実行され得る。センサは、検出された光のスペクトルの分析を可能とする分光機能を有してもよい。また、センサは、共焦点検出器デバイスを構成するために、ダイヤフラムまたはピンホールと結合されてもよい。以下において、本発明の好ましい実行例を構成するものとして2つの技術が詳述される。それにもかかわらず、他の光学的技術、例えばオートコリメーションまたは画像処理による表面へのオートフォーカス、干渉および/またはホログラフィー法、反射波面の分析等も、本発明の方法に適用することができる。表面上の生物学的粒子のクラスターの早期検出に成功裏に適用されている、第1のマイクロトポグラフィー光学技術は、色共焦点マイクロトポグラフィーである。色共焦点マイクロトポグラフィーは、サプライヤーであるStilS.A.により開発されたものであり、フランス特許第2738343号に詳述されている。色共焦点マイクロトポグラフィー技術、または色共焦点画像化は、図3に示される。例えばピンホールに関連した広範囲光源の形態で実装される白色光または、いずれにしても多色光の点光源300は、対物レンズ310により集光される光線301を放出する。このレンズ310は、拡張された軸方向の色収差を示し、その結果、光線301の様々なスペクトル成分が、レンズの光軸に沿って離間したそれぞれの焦点321、322、323等に集光される。このようにして集光された垂直入射光線は、試料の表面330上に方向付けられる。表面330により反射した光は、再びレンズ310を通過し、この時は光源300に向けて伝搬し、反射光の一部が、分光光度計360の正面に配置された軸方向に可動性のピンホール350に向けて方向付けられるビームスプリッタ340により抽出される。これにより空間フィルタリングが達成され、ピンホール350と共役な点から来た光線のみが、分光光度計360に到達することができる。レンズ310の軸方向の色度により、これらの光線は、レンズ310と反射面330との間の距離Hに依存するそれぞれの明確な波長λiを示す。したがって、分光光度計360により測定される波長λiから、距離Hを決定することができる。このように、表面330のトポグラフィー表現を走査により得ることができる。本発明の方法を実行するためのこの技術の使用は、播種されたゲロース培養培地、ならびに、1キロヘルツkHzのサンプリング周波数、約300μmの距離ダイナミックレンジ、および1000ピクセルCCDストリップ各ピクセルは300ナノメートルnmの高さをコードするをその検出器として使用した分光光度計を特徴とする光学システムを使用することにより、実験的に実証されている。スーパーピクセル化等の信号処理方法により、300nm未満の垂直分解能を得ることができる。そのような既知の方法は、隣接するピクセルのコンテンツを結合することにより分解能を改善するのに役立つ。例えば、サプライヤーであるAltimet製Altisurf500装置を使用することができる。実験結果は図4Aおよび4Bに示され、また図5Aから5Eにも示される。これらの図において、3次元シートは、完全に等価でグレースケール暗灰色は低い高度、薄灰色または白色はより高い高度を使用する表現により置き換えられる。図4Aは、スタフィロコッカスエピデルミデスStaphylococcusepidermidisが播種されたゲロース培養培地の表面のトポグラフィー表現である。表面が縞状に数十マイクロメートルにわたり歪んでいることが観察され得る。図4Bは、ベース表面を差し引く前処理後の同じ表現を示す。表面の歪みは消失するが、約2μmの高さ、および10μmから数百μmの範囲にある直径を有する細菌のコロニーを観察するのは困難ではない。その後、コロニーは、局所的勾配の計算および閾値化により自動的に特定された。この例において検討されたゲロース表面のサイズは、1.2mm×5mmであった。図5Aは、バックグラウンドを差し引く前の、大腸菌Escherichiacoliが播種された別のゲロース培養培地の表面のトポグラフィー表現である。図5Bは、縞状の表面不規則性を示すバックグラウンド表面を示し、図5Cは、バックグラウンドが差し引かれた後の表面を示すが、細菌のコロニーが明確に現れている。図5Dおよび5Eは、それらのコロニーのうちの2つの1次元プロファイルの経時的な変動0、1.3h、2.2h、3h、3.9hの時点を示す。約2h後にコロニーが検出可能となること、およびその成長速度を追跡することが可能であることが確認され得る。この方法において、培地の表面のトポグラフィーの表現は、3次元表現である。検出される輪郭は、体積を画定する閉じたループに対応する。使用される輪郭検出方法に依存して、閉じたループは、同じ勾配または同じ高度に対応するピクセルを相互に連結している。輪郭により画定される各体積は、指標により定量化され得るが、この指標は、前記体積に含まれるピクセルの重みすなわち高さの積分を含んでもよい。この積分を計算する間、ピクセルの重みは閾値化に供されてもよい。換言すれば、ある特定の閾値を超える重み値のみが考慮される。この閾値は、輪郭を構成する1つもしくは複数のピクセルの重み、または、輪郭により画定された表面積にわたり分布する1つもしくは複数のピクセルの重みに基づいて確立され得る。体積を構成する微生物の種類が既知である場合、この指標により、そのバイオマスを推定することができる。別の実行例において、生物学的粒子のクラスターは、ストリオスコピーとしても知られるシュリーレン写真法により検出される。シュリーレン写真は、それ自体知られた、フーリエ光学の原理に基づく光学的方法である。図6Aは、本発明の第2の実行例を行うためのシュリーレン構成を示す。点光源600は、実質的に単色の光の発散ビーム601を放出し、これがその後対物レンズ620により集光される。表面611上で成長する検出される微生物のコロニー612を有する播種された培養培地を含む透明ペトリ皿610は、集光されたビームを通過させるようにレンズ620のすぐ下流側に位置付けられる。レンズ620の焦点面には、マスク630が配置される。マスクは、偏向されることなくレンズおよびペトリ皿を通過してきた光源から来る光線の全てを遮蔽する。表面611が完全に平面で均一であるおよび幾何光学近似の範囲内である場合、ビーム601内の光の全ては、マスクにより遮断される。実際には、コロニー612に起因するものを含む表面不規則性611は、光線の一部を偏向してマスクを通過させる。フーリエ光学の観点からは、レンズの焦点面内において、表面611の空間周波数スペクトルに対応する光の分布が形成され、したがってマスクは高域空間フィルタリングを行うことが知られている。画像化システムカメラ640は、マスクの下流側に位置付けられ、培養培地の表面上に焦点を合わせられる。画像化システムにより取得された画像は、表面611の局所的勾配に関する情報を含み、したがって、前記表面の3次元シートを再構成することが可能となるさらにより良いことには、これはすでに部分的に高域フィルタリングに供されており、いかなる前処理も必要としない。マスクは有限寸法のものであることを考慮すると、閾値以上の角度で偏向された光線のみが検出される。この閾値は、マスクがレンズの回折パターンと同じサイズを示す場合に最小となる。光源600が純粋に点光源であると仮定するとこれは常に近似である、検出され得る唯一の局所的勾配は、λ/n-1d式中、λは使用される光の波長であり、dは、レンズの直径であり、nは、媒体の屈折率であるを超える勾配である。角度αの局所的勾配は、角度n-1αで光線を偏向し、回折を超える偏差のみが観察され得る。実際には、培養培地は数ミリラジアン規模の表面欠陥を有し、いかなる前処理もなしに実行可能とするためには、この理論的境界値よりはるかに大きいマスクが必要となる。マスクの直径は、n-1lpmax式中、pmaxは、表面欠陥の最大局所的勾配であり、lは、レンズとマスクとの間の距離であるの規模である必要がある。1μmの厚さおよび30μmの直径を有する微小コロニーは、1.35-1/15=23ミリラジアンの波面に対する平均局所的勾配をもたらし、これは、ゲルの表面欠陥よりはるかに大きく、したがって容易に観察される。コロニーの端部における局所的勾配はさらにより大きく、典型的には、数百ミリラジアンまたは10分の数ラジアン以上である。色共焦点画像化等の幾何学的マッピング技術に勝るシュリーレン写真の利点は、微小コロニーのサイズよりも高い横方向の分解能を有する必要がないことであり、黒いバックグラウンドが使用されているため、分解能限界より小さい物体を検出および位置決定するのは困難ではないただし、当然ながら、前記分解能限界より互いに近接した2つの物体を分離することはできない。別の利点は、単一取得において、観察野が上述の共焦点マイクロトポグラフィー技術を使用した場合よりも広範な領域に及ぶことができることである。したがって、シュリーレン法により画像を取得することによって、ペトリ皿の広範な部分、またはさらに皿の全てを観察することができる。この方法において、培地の表面のトポグラフィーの表現は2次元表現、すなわち画像であり、2つの隣接するピクセルの間の強度の変動は、照射された物体の表面の高度の変動、および/またはその屈折率の局所的変動を表す。検出される輪郭は、面積を画定する閉じたループに対応する。これらのループは、共通したグレーレベルの変動に対応するピクセルを相互に連結する。2つの隣接するピクセルの間の高度の変動が、細菌のコロニーにより生成される場合、その端部は、典型的には10分の数ラジアンを超える、培養培地の表面に対する角度を形成する。そのような勾配は、関連する角度が典型的には10ミリラジアン未満である培養培地のレベルの変動により形成される勾配より大きい。図6Bは、シュリーレン写真により本発明の方法を実行することができる別の構成を示す。図6Aの構成とは異なり、照射ビーム301’は、透明ペトリ皿610を通過する際に平行化され、次いで、皿の下流側の第1のレンズ620’により集光されるレンズの焦点距離:200mm、直径:50mmこれらの値は例示のみを目的として示される。第2のレンズ621焦点距離:10mm、開口数NA:f/3ここでも、これらの値は例示のみを目的として示されるは、ペトリ皿の画像を形成する。レンズ620’の焦点面内にあるマスク630’は、観察表面611における局所的勾配変動により、または前記表面における屈折率の局所的変動により反射されなかった光線および下方に偏向された光線、ただしこれは必須ではないを遮断する。細菌のコロニーが培養培地の表面611上で成長すると、表面に入射する光放射を偏向し、光はマスク630’上に集束せずに検出器640例えば、1400×10003μmピクセルを有するカメラにより検出される。したがって、細菌のコロニー612は、表面611における局所的勾配のばらつきを生じさせるため、それらは、黒いバックグラウンド上の光の点の形態で、検出器640により検出され得る。図6Aの構成の場合のように、発散/集束ビームの代わりに平行照射ビームを使用することは、信号の強度を、観察されている表面の部分の位置から独立させる効果を有する。換言すれば、観察野全体にわたり、培養培地610の表面611上の局所的勾配の位置とは無関係に、観察表面における同じ局所的勾配が、検出器において同じ強度を有する信号を生成する。図6Cは、トリプケース大豆ゲロースTSA型ゲロースの表面上に播種されてから8時間後の大腸菌型の細菌のコロニーを観察するための、図6Bの構成の使用に対応する。白い点は、細菌のコロニーに対応する。画像の右下部分における明るい直角を形成する連続線は、視覚的基準を構成するスライドガラスに対応する。図6Dは、播種から24時間後の同じ培養培地の写真である。図6Dにおける撮影された細菌のコロニーと、透過シュリーレン写真により検出された図6Cに示されるものとの間に、良好な一致が見られることが確認され得る。シュリーレン写真はまた、検出器と同様に光源が培養培地に面するように配置される反射構成においても実行することができる。これは、不透明な培地を観察するのに適切である。別の実行例において、細菌のコロニーは、オンブロスコピーの技術を実装した構成により観察される。そのような構成を図7Aに示す。平行光線が、培養培地を含むペトリ皿710を通過し、次いで第1のレンズ720レンズの焦点距離:200mm、直径:50mmこれらの値は、例示のみを目的として示されるにより検出器740上に集光される。細菌のコロニー712が培養培地の表面711上に成長すると、高度、ひいては表面711上に形成される局所的勾配の変動のために光放射を偏向する。シュリーレン法とは異なり、観察表面上の高度の変動および/または屈折率の変動により偏向された放射は、検出器7401400×10003μmピクセルを有するカメラ、焦点距離f=10mm、開口数NA=f/3の対物レンズこれらの値は例示のみを目的として示されるにより検出されない。このデバイスは、検出器740により形成された画像に表れる暗いゾーンにより、分析される平面上の局所的勾配を検出するのに役立つ。したがって、この方法において、細菌のコロニー712は、薄いバックグラウンド上の暗い点の形態で観察され、このバックグラウンドは、培養培地の表面711に対応する。シュリーレン写真の話題で上述したように、オンブロスコピーを実行する際、培地の表面のトポグラフィーの表現は2次元表現、すなわち画像であり、2つの隣接するピクセルの間の強度の変動は、照射された物体の表面の高度の変動を表す。また、この強度の変動は、前記表面における屈折率の局所的変動を表し得る。図7Bは、TSAゲロースの表面上に播種されてから8時間後の大腸菌型の細菌のコロニーを観察するために、図7Aの構成を使用した結果を示す。暗い点は、細菌のコロニーに対応する。これらのコロニーは、図6Dの結果写真および透過シュリーレン写真により得られた図6Cに示される観察に一致する場所にあることが観察され得る。シュリーレン技術と同様に、オンブロスコピーにより、検出器740と同様に光源700が観察される培養培地を含むペトリ皿710に面するように配置される反射構成において、細菌のコロニーの観察を実行することができる。図7Cは、そのような構成を示し、光源から生成される光放射は、ビームスプリッタ750により偏向され、次いでレンズ720により平行化される。そのような構成は、培養培地が不透明である場合に好ましい。シュリーレン写真および表面マッピングの両方に関して、成長による変化を明確化するために好適な画像処理および連続画像減算の任意の方法を使用することが有利である。クラスターの場所が特定されたら、細菌自体は、例えばinsitu分析回折、ラマン分光により、または質量分析等の他の分析方法による既知の測定を使用して同定され得る。そのような状況下では、分析はexsituで行われ、したがって細菌のコロニーを取り出す必要がある。トポグラフィーによる位置は、例えば、ある特定の閾値を超える体積のクラスターを選択可能とすることができ、選択されたクラスターは、その後定性分析に供される。本発明は、培養培地の表面上の微生物のコロニーを検出することに限定されない。検出される生物学的クラスター、より一般的には生物学的粒子が位置する表面は、同等に良好に、固体、例えばガラスまたは機能化シリコンの基板であってもよく、または、濾液中に得られる細菌を回収するために使用され、恐らくは、ただし必ずではないが、培養培地上に設置するのに好適な微細孔フィルタであってもよい。方法の第2のステップE2中に実行される前処理操作は、好ましくは、考慮される表面の種類に適合される。表面の上にある周囲媒体は、真空、またはガスもしくは液体等の流体であってもよく、ガス、特に空気が好ましい。周囲媒体は、汚染の危険性、および該当する場合にはゲロースの揮発の危険性を回避するために、密閉されていてもよい。"