iPS細胞の樹立効率の改善方法であって、核初期化工程において、サイクリンDファミリーに属するタンパク質及びそれらをコードする核酸からなる群より選択される1以上の因子を体細胞に接触させることを含む、方法。前記タンパク質が、サイクリンD1、サイクリンD2及びサイクリンD3である、請求項1記載の方法。サイクリンDファミリーに属するタンパク質及びそれらをコードする核酸からなる群より選択される因子を含有してなる、iPS細胞の樹立効率改善剤。前記タンパク質が、サイクリンD1、サイクリンD2及びサイクリンD3である、請求項3記載の剤。体細胞に核初期化物質と、サイクリンDファミリーに属するタンパク質及びそれらをコードする核酸からなる群より選択される1以上の因子とを接触させることを含む、iPS細胞の製造方法。核初期化物質が、Octファミリーのメンバー、Soxファミリーのメンバー、Klf4ファミリーのメンバー、Mycファミリーのメンバー、Linファミリーのメンバー及びNanog、並びにそれらをコードする核酸からなる群より選択される、請求項5記載の方法。核初期化物質が、Oct34、Sox2及びKlf4、又はそれらをコードする核酸である、請求項6記載の方法。核初期化物質が、Oct34、Sox2、Klf4及びcMyc、又はそれらをコードする核酸である、請求項6記載の方法。核初期化物質が、Oct34、Sox2、Klf4及びLMyc、又はそれらをコードする核酸である、請求項6記載の方法。サイクリンDファミリーに属するタンパク質が、サイクリンD1、サイクリンD2及びサイクリンD3である、請求項5~9のいずれか一項に記載の方法。サイクリンDファミリーに属するタンパク質及びそれらをコードする核酸からなる群より選択される因子と、核初期化物質とを含有してなる、体細胞からのiPS細胞誘導剤。核初期化物質が、Octファミリーのメンバー、Soxファミリーのメンバー、Klf4ファミリーのメンバー、Mycファミリーのメンバー、Linファミリーのメンバー及びNanog、並びにそれらをコードする核酸からなる群より選択される、請求項11記載の剤。核初期化物質が、Oct34、Sox2及びKlf4、又はそれらをコードする核酸である、請求項12記載の剤。核初期化物質が、Oct34、Sox2、Klf4及びcMyc、又はそれらをコードする核酸である、請求項12記載の剤。核初期化物質が、Oct34、Sox2、Klf4及びLMyc、又はそれらをコードする核酸である、請求項12記載の剤。サイクリンDファミリーに属するタンパク質が、サイクリンD1、サイクリンD2及びサイクリンD3である、請求項11~15のいずれか一項に記載の剤。サイクリンD1、サイクリンD2又はサイクリンD3をコードする外来性核酸を含む、iPS細胞。外来性核酸がゲノムに組み込まれている、請求項17記載のiPS細胞。請求項17又は18記載のiPS細胞に対して分化誘導処理を行い、iPS細胞を体細胞に分化させることを含む、体細胞の製造方法。下記の工程:1請求項5~10のいずれか一項に記載の方法によりiPS細胞を製造する工程、及び2上記工程1で得られたiPS細胞に分化誘導処理を行い、iPS細胞を体細胞に分化させる工程、を含む、体細胞の製造方法。iPS細胞の樹立効率改善のための、サイクリンDファミリーに属するタンパク質及びそれらをコードする核酸からなる群より選択される1以上の因子の使用。サイクリンDファミリーに属するタンパク質が、サイクリンD1、サイクリンD2及びサイクリンD3である、請求項21記載の使用。iPS細胞の製造のための、サイクリンDファミリーに属するタンパク質及びそれらをコードする核酸からなる群より選択される1以上の因子の使用であって、該因子を核初期化物質とともに体細胞に接触させる、使用。核初期化物質が、Octファミリーのメンバー、Soxファミリーのメンバー、Klf4ファミリーのメンバー、Mycファミリーのメンバー、Lin28ファミリーのメンバー及びNanog、並びにそれらをコードする核酸からなる群より選択される、請求項23記載の使用。核初期化物質が、Oct34、Sox2及びKlf4、又はそれらをコードする核酸である、請求項24記載の使用。核初期化物質が、Oct34、Sox2、Klf4及びcMyc、又はそれらをコードする核酸である、請求項24記載の使用。核初期化物質が、Oct34、Sox2、Klf4及びLMyc、又はそれらをコードする核酸である、請求項24記載の使用。サイクリンDファミリーに属するタンパク質が、サイクリンD1、サイクリンD2及びサイクリンD3である、請求項23~27のいずれか一項に記載の使用。体細胞の製造における、請求項17又は18記載のiPS細胞の使用。体細胞を製造するための細胞ソースとしての、請求項17又は18記載のiPS細胞。発明の要約本発明の目的は、iPS細胞の樹立効率を改善する手段を提供することであり、それを用いた効率的なiPS細胞の製造方法を提供することである。本発明者らは、マウス胎児線維芽細胞MEFに、p53p21経路の様々な候補遺伝子を4遺伝子Oct34、Sox2、Klf4及びcMyc又は3遺伝子Oct34、Sox2及びKlf4とともにトランスフェクトし、細胞を試験して樹立効率が改善するか否かを調べた。その結果、本発明者らは、サイクリンDファミリーに属する遺伝子サイクリンD1、D2及びD3が、MEFからのiPS細胞の樹立効率を顕著に改善することを発見した。これらの遺伝子は、成人ヒト皮膚線維芽細胞HDFからのiPS細胞の樹立効率も改善した。サイクリンD遺伝子は顕著な細胞増殖刺激効果を有さなかったので、該遺伝子のiPS細胞樹立効率改善効果は、主に細胞増殖刺激以外の何らかのメカニズムによるものと示唆される。本発明者らは、これらの知見に基づいてさらに研究を重ねた結果、本発明を完成するに至った。即ち、本発明は以下の通りのものである。[1]iPS細胞の樹立効率の改善方法であって、核初期化工程において、サイクリンDファミリーに属するタンパク質及びそれらをコードする核酸からなる群より選択される1以上の因子を体細胞に接触させることを含む、方法。[2]前記タンパク質が、サイクリンD1、サイクリンD2及びサイクリンD3である、上記[1]記載の方法。[3]サイクリンDファミリーに属するタンパク質及びそれらをコードする核酸からなる群より選択される因子を含有してなる、iPS細胞の樹立効率改善剤。[4]前記タンパク質が、サイクリンD1、サイクリンD2及びサイクリンD3である、上記[3]記載の剤。[5]体細胞に核初期化物質と、サイクリンDファミリーに属するタンパク質及びそれらをコードする核酸からなる群より選択される1以上の因子とを接触させることを含む、iPS細胞の製造方法。[6]核初期化物質が、Octファミリーのメンバー、Soxファミリーのメンバー、Klf4ファミリーのメンバー、Mycファミリーのメンバー、Linファミリーのメンバー及びNanog、並びにそれらをコードする核酸からなる群より選択される、上記[5]記載の方法。[7]核初期化物質が、Oct34、Sox2及びKlf4、又はそれらをコードする核酸である、上記[6]記載の方法。[8]核初期化物質が、Oct34、Sox2、Klf4及びcMyc、又はそれらをコードする核酸である、上記[6]記載の方法。[9]核初期化物質が、Oct34、Sox2、Klf4及びLMyc、又はそれらをコードする核酸である、上記[6]記載の方法。[10]サイクリンDファミリーに属するタンパク質が、サイクリンD1、サイクリンD2及びサイクリンD3である、上記[5]~[9]のいずれかに記載の方法。[11]サイクリンDファミリーに属するタンパク質及びそれらをコードする核酸からなる群より選択される因子と、核初期化物質とを含有してなる、体細胞からのiPS細胞誘導剤。[12]核初期化物質が、Octファミリーのメンバー、Soxファミリーのメンバー、Klf4ファミリーのメンバー、Mycファミリーのメンバー、Linファミリーのメンバー及びNanog、並びにそれらをコードする核酸からなる群より選択される、上記[11]記載の剤。[13]核初期化物質が、Oct34、Sox2及びKlf4、又はそれらをコードする核酸である、上記[12]記載の剤。[14]核初期化物質が、Oct34、Sox2、Klf4及びcMyc、又はそれらをコードする核酸である、上記[12]記載の剤。[15]核初期化物質が、Oct34、Sox2、Klf4及びLMyc、又はそれらをコードする核酸である、上記[12]記載の剤。[16]サイクリンDファミリーに属するタンパク質が、サイクリンD1、サイクリンD2及びサイクリンD3である、上記[11]~[15]のいずれかに記載の剤。[17]サイクリンD1、サイクリンD2又はサイクリンD3をコードする外来性核酸を含む、iPS細胞。[18]外来性核酸がゲノムに組み込まれている、上記[17]記載のiPS細胞。[19]上記[17]又は[18]記載のiPS細胞に対して分化誘導処理を行い、iPS細胞を体細胞に分化させることを含む、体細胞の製造方法。[20]下記の工程:1上記[5]~[10]のいずれかに記載の方法によりiPS細胞を製造する工程、及び2上記工程1で得られたiPS細胞に分化誘導処理を行い、iPS細胞を体細胞に分化させる工程、を含む、体細胞の製造方法。[21]iPS細胞の樹立効率改善のための、サイクリンDファミリーに属するタンパク質及びそれらをコードする核酸からなる群より選択される1以上の因子の使用。[22]サイクリンDファミリーに属するタンパク質が、サイクリンD1、サイクリンD2及びサイクリンD3である、上記[21]記載の使用。[23]iPS細胞の製造のための、サイクリンDファミリーに属するタンパク質及びそれらをコードする核酸からなる群より選択される1以上の因子の使用であって、該因子を核初期化物質とともに体細胞に接触させる、使用。[24]核初期化物質が、Octファミリーのメンバー、Soxファミリーのメンバー、Klf4ファミリーのメンバー、Mycファミリーのメンバー、Lin28ファミリーのメンバー及びNanog、並びにそれらをコードする核酸からなる群より選択される、上記[23]記載の使用。[25]核初期化物質が、Oct34、Sox2及びKlf4、又はそれらをコードする核酸である、上記[24]記載の使用。[26]核初期化物質が、Oct34、Sox2、Klf4及びcMyc、又はそれらをコードする核酸である、上記[24]記載の使用。[27]核初期化物質が、Oct34、Sox2、Klf4及びLMyc、又はそれらをコードする核酸である、上記[24]記載の使用。[28]サイクリンDファミリーに属するタンパク質が、サイクリンD1、サイクリンD2及びサイクリンD3である、上記[23]~[27]のいずれかに記載の使用。[29]体細胞の製造における、上記[17]又は[18]記載のiPS細胞の使用。[30]体細胞を製造するための細胞ソースとしての、上記[17]又は[18]記載のiPS細胞。本発明のiPS細胞樹立効率改善因子は、上述のとおり、マスター遺伝子p53自体を阻害することなく、cMycを除く3因子によるiPS細胞樹立効率を顕著に改善できるので、例えば、iPS細胞の再生医療への応用等に有用である。実施例1:p53p21経路関連因子がiPS細胞樹立に及ぼす効果の検討1p53p21経路に存在する各種因子PCNA、CDK2、サイクリンD1がiPS細胞の樹立効率に影響を及ぼすか否かを調べた。NanogGFPIRESPurorを有するNanogレポーターマウスOkitaKetalNature448313317から得られた胎仔線維芽細胞MEFに対して、以下の遺伝子をレトロウイルスで導入した。1マウス由来のOct34、Sox2、Klf4、cMyc、DsRed2マウス由来のOct34、Sox2、Klf4、cMyc、PCNA3マウス由来のOct34、Sox2、Klf4、cMyc、CDK24マウス由来のOct34、Sox2、Klf4、cMyc、サイクリンD1レトロウイルスは、前日に6ウェル培養プレートの1ウェル当り06×106で播種したPlatE細胞にレトロウイルス発現ベクターを個々に導入して作製した。培養液はDMEM10FCS、10FCS、50unitsペニシリン及び50μgmlストレプトマイシンを使用し、37°C、5CO2で培養した。ベクターの導入のためにFuGene6transfectionreagent45μLをOptiMEMIReducedSerumMedium100μLに入れ、室温で5分間静置した。その後、各発現ベクターを15μg加え、さらに室温で15分静置してからPlatEの培養液に加えた。2日目にPlatEの上清を新しい培地に換え、3日目に培養上清を回収して045μm滅菌フィルターsterilefilterWhatmanで濾過し、ポリブレンを4μgmLとなるように加えてウイルス液とした。次に、3継代目のMEFを01ゼラチンでコートした6ウェル培養プレートの1ウェル当り10×105で播種した。培養液はDMEM10FCSを使用し、37°C、5CO2で培養した。翌日、前記1~4の組み合わせで各レトロウイルス液を加え、一晩感染させて遺伝子を導入した。ウイルス感染後3日目にMEFの培地を除き、ES細胞用培地を加えた。5日目に培地を除き、PBS1mLを加えて細胞を洗浄した。PBSを除いた後、025トリプシン1mMEDTAを加えて、37°Cで5分間程度反応させた。細胞が浮き上がったらES細胞用培地を加えて懸濁し、5000個の細胞を、マイトマイシンC処理したSTOフィーダー細胞を蒔いておいた100mmディッシュに蒔いた。以後2日ごとにES細胞用培地の交換を行った。感染から5日目の蒔き直し時に細胞数を数えた結果を図1左に示す。また5×103細胞100mmディッシュで蒔き直しし、感染から24日目にGFP陽性コロニー数を数えた結果を図1右に示す。4遺伝子にPCNA、CDK2又はサイクリンD1を加えても、細胞増殖を促進する効果は認められなかった図1左。しかしながら、サイクリンD1を加えた場合にiPS細胞コロニー数の顕著な上昇が認められた図1右。以上の結果から、サイクリンD1がiPS細胞の樹立効率を上昇させることが明らかとなり、またこの作用は主に細胞増殖以外の作用によるものであることが示唆された。実施例2:p53p21経路関連因子がiPS細胞樹立に及ぼす効果の検討2実施例1と同様の実験を、4遺伝子ではなく3遺伝子Oct34、Sox2、Klf4にp53p21経路の各遺伝子PCNA、CDK2、サイクリンD1を加えた組み合わせで行った。感染から5日目の蒔き直し時に細胞数を数えた結果を図2左に示す。また5×104細胞100mmディッシュで蒔き直しし、感染から30日目にGFP陽性コロニー数を数えた結果を図2右に示す。実施例1と同様に、4遺伝子にPCNA、CDK2又はサイクリンD1を加えても細胞増殖を顕著に促進する効果は認められなかった図2左。しかしながら、サイクリンD1を加えた場合にiPS細胞コロニー数の顕著な上昇が認められた図2右。以上の結果から、4遺伝子の場合のみならず3遺伝子にサイクリンD1を加えた場合も、iPS細胞の樹立効率が上昇することが明らかとなった。またこの作用は主に細胞増殖以外の作用によるものであることが示唆された。実施例3:サイクリンDファミリーがiPS細胞樹立に及ぼす効果の検討サイクリンDファミリーに属する因子であるサイクリンD2及びサイクリンD3にも、サイクリンD1と同様のiPS細胞樹立効率上昇効果があるか否かを検討した。実験は実施例2と同様にして、3遺伝子Oct34、Sox2、Klf4にサイクリンDファミリーの各遺伝子サイクリンD1、サイクリンD2、サイクリンD3を加えた組み合わせで行った。感染から5日目の蒔き直し時に細胞数を数えた結果を図3左に示す。また2×105細胞100mmディッシュで蒔き直しし、感染から28日目にGFP陽性コロニー数を数えた結果を図3右に示す。実験は3回の実験の平均値を示す。3遺伝子にサイクリンD1、サイクリンD2又はサイクリンD3を加えても細胞増殖を顕著に促進する効果は認められなかった図3左。一方、3遺伝子にサイクリンD2又はサイクリンD3を加えた場合も、サイクリンD1と同様にiPS細胞コロニー数の顕著な上昇が認められた図3右。以上の結果から、サイクリンD1のみならずサイクリンD2及びサイクリンD3も、iPS細胞の樹立効率を上昇させることが明らかとなった。またこの作用は主に細胞増殖以外の作用によるものであることが示唆された。実施例4:内在性サイクリンD1の初期化過程における発現核初期化過程における内在性サイクリンD1の発現を検討した。Nanogレポーターマウスから得られたMEFに対して、実施例1と同様の手法により、以下の遺伝子をレトロウイルスで導入した。マウス由来のOct34、Sox2、Klf4、DsRedマウス由来のOct34、Sox2、Klf4、cMycマウス由来のOct34、Sox2、Klf4、LMycマウス由来のcMyc、DsRedマウス由来のLMyc、DsRed感染から3日目及び5日目に、内在性のサイクリンD1を常法によりウエスタンブロットで検出した結果を図4に示す。図4は、Oct34、Sox2及びKlf4を導入した場合の値バンドの濃さを1とした場合の相対値を示す。図4に示されるように、3遺伝子Oct34、Sox2、Klf4又は4遺伝子Oct34、Sox2、Klf4、cMyc又はOct34、Sox2、Klf4、LMycで初期化誘導することにより、内在性サイクリンD1の発現量が上昇していたことから、サイクリンD1が初期化の早い段階で発現誘導されることが明らかとなった。なおサイクリンD1の発現上昇は、cMyc又はLMycの単独導入によっても検出された。実施例5:サイクリンD1がヒトiPS細胞樹立に及ぼす効果の検討サイクリンD1がヒトiPS細胞の樹立に効果を及ぼすか否かを検討した。成人白人女性、73歳の皮膚由来線維芽細胞HDF:細胞名1503に対して、TakahashiKらCell131861872に記載の方法に従い、レンチウイルスを用いて、マウスエコトロピックウイルスレセプターSlc7a1遺伝子を発現させた。この細胞1×105個ウェル、6ウェルプレートに対して、TakahashiKらCell131861872に記載の方法に従い、以下の遺伝子をレトロウイルスで導入し、生じたiPS細胞コロニー数を4遺伝子Oct34、Sox2、Klf4、cMyc導入の場合と比較した。1ヒト由来のOct34、Sox2、Klf4、cMyc、マウス由来の天然型サイクリンD12ヒト由来のOct34、Sox2、Klf4、cMyc、マウス由来のT156AサイクリンD13ヒト由来のOct34、Sox2、Klf4、cMyc、マウス由来のT286AサイクリンD1ここでT156AサイクリンD1とはサイクリンD1の156番目のスレオニンをアラニンに置換した不活性型変異体不活性型ミュータントサイクリンD1である。サイクリンD1は細胞周期をS期へと移行する作用を有するが、T156AサイクリンD1はこの作用が減弱されることが知られている。またT286AサイクリンD1とはサイクリンD1の286番目のスレオニンをアラニンに置換することにより、核からの排除に抵抗性を示し、その結果プロテオソームによる分解に抵抗性を有するようになった、サイクリンD1の安定型変異体である。ウイルス感染から7日後に細胞を回収し、フィーダー細胞上への蒔き直しを行った05×105個100mmディッシュ。フィーダー細胞にはマイトマイシンCで処理して、細胞分裂を止めたSNL細胞McMahonAPBradleyACell6210731085を用いた。感染10日後から霊長類ES細胞培養用培地に4ngmlの組換えヒトbFGFWAKOを加えた培地で培養を行った。感染から24日目に得られたiPS細胞コロニー数を測定した結果を図5に示す。4遺伝子に天然型サイクリンD1を加えることにより、iPS細胞コロニー数が劇的に増加した。その効果はドミナントネガティブ変異体であるT156AサイクリンD1を用いた場合は抑制され、一方、安定型変異体であるT286AサイクリンD1を用いた場合はさらに増加した。以上によりサイクリンD1はヒト細胞にも効果を有することが明らかとなった。本発明を好ましい態様を強調して説明してきたが、好ましい態様が変更され得ることは当業者にとって自明であろう。本発明は、本発明が本明細書に詳細に記載された以外の方法で実施され得ることを意図する。従って、本発明は添付の請求の範囲の精神及び範囲に包含されるすべての変更を含むものである。ここで述べられた特許及び特許出願明細書を含む全ての刊行物に記載された内容は、ここに引用されたことによって、その全てが明示されたと同程度に本明細書に組み込まれるものである。本願は、米国仮特許出願第61410178号を基礎としており、その内容は、ここで参照したことにより本明細書に組み込まれる。