反応液内の抗体結合担体又は抗原結合担体に反応した抗原又は抗体と未反応な遊離抗原又は遊離抗体を洗浄し前記未反応な遊離抗原又は遊離抗体を吸引部ノズルにより吸引することで分離するB/F分離部を備えた免疫測定装置であって、前記B/F分離部の前段に、前記反応容器に光照射を行う発光部と、反応容器の透過光を測定する受光部と、を備えた測光部と、前記受光部における受光強度に基づいて、前記吸引部の詰まりの原因となる不溶物の有無を判定する不溶物判定部と、を有することを特徴とする免疫測定装置。さらに、不溶物の有無を判定するしきい値を格納するしきい値格納部を設け、前記不溶物判定部は、前記受光部の受光強度と、前記しきい値との大小関係に基づいて、不溶物の有無を判定することを特徴とする請求項1に記載の免疫測定装置。前記担体は、磁性粒子であることを特徴とする請求項1又は2に記載の免疫測定装置。前記発光部の光源として、LEDを用いることを特徴とする請求項1から3までのいずれか1項に記載の免疫測定装置。前記LEDとして、赤色LEDを用いることを特徴とする請求項4に記載の免疫測定装置。前記受光部は、赤色を検出波長帯に含む第1の受光素子と、赤色を検出波長帯に含む第2の受光素子であって、赤色以外をフィルタリングするフィルタ部を受光面側に設け第2の受光素子との受光強度の差異に基づいて、前記不溶物判定部が不溶物の判定を行うことを特徴とする請求項5に記載の免疫測定装置。前記しきい値は、モデル検体として、前記吸引部の開口径に近似した沈殿物を有するモデル検体を入れた反応容器における第1の受光強度と、モデル検体を入れていない反応容器における第2の受光強度との間の値として決められることを特徴とする請求項1から6までのいずれか1項に記載の免疫測定装置。前記吸引部の詰まりの原因となる不溶物の有無を判定する不溶物判定部は、前記受光部における受光強度に依存するパラメータの積算値に基づいて、不溶物の有無を判定することを特徴とする請求項1から7までのいずれか1項に記載の免疫測定装置。前記測光部は、前記発光部と前記受光部とが対向する位置に配置され、前記反応容器を鉛直方向にスキャンさせる操作部を有していることを特徴とする請求項1から8までのいずれか1項に記載の免疫測定装置。前記測光部の近傍に、前記不溶物判定部が不溶部有りと判定した前記反応容器を排出または廃棄する廃棄部を備えることを特徴とする請求項9に記載の免疫測定装置。反応容器内の抗体又は抗原結合担体に反応した抗原又は抗体と未反応な遊離抗原又は抗体を洗浄し吸引部ノズルにより吸引することで分離するB/F分離処理を含む免疫測定法であって、前記B/F分離ステップの前ステップとして、前記反応容器に光照射を行う発光部と、反応容器の透過光を測定する受光部と、を備えた測光ステップと、前記受光部における受光強度に基づいて、前記吸引部の詰まりの原因となる不溶物の有無を判定する不溶物判定ステップと、を有することを特徴とする免疫測定法。請求項11に記載の免疫測定法をコンピュータに実行させるためのプログラム。しかしながら、特許文献1に記載の技術を用いた場合に、B/F分離後の吸引工程において、ノズルが不溶物により詰まるという問題が生じていた。また、特許文献2に記載の技術では、検体の画像情報に基づいて白濁の度合いを検査しているが、目視の場合と同様に、検出精度があまり良くないという問題もある。また、B/F分離工程における問題点として、例えば、HCVC型肝炎ウイルスコア抗原などの測定系においては、ウイルス内のコア抗原を表出させるために、界面活性剤を含む酸やアルカリによる変性前処理が必要となる。この前処理を、高タンパク血症の検体で行うと、不可逆的なタンパク変性が生じ多様な不溶物が発生するという問題がある。かかる処理により生じた変性物や血漿または血清のフィブリン塊、尿便中の不純物などの不溶物がB/F分離の際に用いる吸引ノズル7を詰まらせるという現象が生じ、B/F分離処理部を含む装置の不良トラブルが発生するという問題がある。また、B/F分離処理が不完全になることで、測定結果が偽陽性になったり、偽陰性になったりすることにより、医療過誤の要因となるという問題もあった。本発明は、B/F分離処理を含む免疫測定技術において、B/F分離に用いるノズルが不溶物により詰まるという問題を解決することを目的とする。また、不溶物の検出精度を向上させることを目的とする。上記目的を達成するために、本発明のB/F分離を含む免疫測定装置においては、B/F分離部の前段に、不溶物検出部とその測光結果に基づいて不溶物の有無を判定する不溶物判定部とを設け、当該不溶物判定部において、前記B/F分離部において反応容器の内側壁に捕捉されなかった不純物を含む非磁性成分不溶物により、ノズルで吸引する際のノズルの詰まりが生じうるか否かを光の透過率に基づいて予め判定し、ノズル詰まりが生じない程度の透過率が得られなかった場合には、そのサンプルは、不溶物によりノズルを詰まらす可能性が高いと判定することを特徴とする。B/F分離部によるノズル吸引より前に、不溶物の有無を判定することで、不溶物に起因するノズル詰まりを防止し、また、不溶物に起因するB/F分離処理が不完全になることを抑制して、抗原濃度などの測定結果が偽陽性になったり、偽陰性になったりすることによる、医療過誤の要因を少なくすることができる。例えば、B/F分離における免疫測定装置のトラブルまたは、医療過誤を回避するために、B/F分離工程前で反応容器に光等を照射し、対向側に配置された受光素子フォトダイオードなどにより、吸光度変化に基づいて、反応容器内の不溶物の有無の判定を行う。この不溶物の判定には、吸光度の積算値やピーク値などを使用することができる。そして、不溶物が有と判定された場合は、B/F分離工程に入る前にその試料を排出または廃棄する。尚、光源としてLEDを用いる場合には、赤、緑、青の全て又はいずれかを使用することができる。光源としては、可視光域を含む波長帯を有する光を用いることができる。本発明の一観点によれば、反応容器内の抗体結合磁性粒子又は抗原結合磁性粒子に反応した抗原又は抗体と未反応な遊離抗原又は遊離抗体を洗浄し、前記未反応な遊離抗原又は遊離抗体を吸引部ノズルにより吸引することで分離するB/F分離部を備えた免疫測定装置であって、前記B/F分離部の前段に、前記反応容器に光照射を行う発光部と、反応容器の透過光を測定する受光部と、を備えた測光部と、前記受光部における受光強度に基づいて、前記吸引部の詰まりの原因となる不溶物の有無を判定する不溶物判定部と、を有することを特徴とする免疫測定装置が提供される。さらに、不溶物の有無を判定するしきい値を格納するしきい値格納部を設け、前記不溶物判定部は、前記受光部の受光強度と、前記しきい値との大小関係に基づいて、不溶物の有無を判定することを特徴とすることが好ましい。しきい値として、吸光度または電圧の積算値を用いることが好ましい。前記発光部の光源として、LEDを用いることが好ましい。前記LEDとして、赤色LEDを用いることが好ましい。共存物質が混入している場合でも、赤色LEDであれば、しきい値を超えない試料を、不溶物の入っている試料と判定しない。前記受光部は、赤色を検出波長帯に含む第1の受光素子と、赤色を検出波長帯に含む第2の受光素子であって、赤色以外をフィルタリングするフィルタ部を受光面側に設け第2の受光素子との受光強度の差異に基づいて、前記不溶物判定部が不溶物の判定を行うことが好ましい。第1受光素子で不溶物とされても、第2受光素子で赤色とされた場合には、ヘモグロビンの共存物質として、不溶物と判定しない。前記しきい値は、モデル検体として、前記吸引部の開口径に近似した粒径を有する沈殿物を入れた反応容器における第1の受光強度と、沈殿物を入れていない反応容器における第2の受光強度との間の値として決められることが好ましい。前記吸引部の詰まりの原因となる不溶物の有無を判定する不溶物判定部は、前記受光部における受光強度に依存するパラメータの積算値に基づいて、不溶物の有無を判定することが好ましい。前記測光部は、前記発光部と前記受光部とが対向する位置に配置され、前記反応容器を鉛直方向にスキャンさせる操作部を有していることが好ましい。これにより積算値を求めることができる。前記測光部の近傍に、前記不溶物判定部が不溶物有りと判定した前記反応容器を排出または廃棄する廃棄部を備えることが好ましい。本発明の他の観点によれば、反応容器内の抗体又は抗原結合磁性粒子に反応した抗原又は抗体と未反応な遊離抗原又は抗体を洗浄し吸引部ノズルにより吸引することで分離するB/F分離処理を含む免疫測定法であって、前記B/F分離ステップの前ステップとして、前記反応容器に光照射を行う発光部と、反応容器の透過光を測定する受光部と、を備えた測光ステップと、前記受光部における受光強度に基づいて、前記吸引部の詰まりの原因となる不溶物の有無を判定する不溶物判定ステップと、を有することを特徴とする免疫測定法が提供される。また、本発明は、上記に記載の免疫測定法をコンピュータに実行させるためのプログラム、当該プログラムを記録するコンピュータ読み取り可能な記録媒体であっても良い。本発明によれば、B/F分離を含む免疫測定装置において、B/F分離処理における不溶物に起因するノズル詰まりを防止することができる。また、不溶物に起因するB/F分離処理が不完全になることを抑制して、対象物質の濃度などの測定結果が偽陽性になったり、偽陰性になったりすることによる、医療過誤の要因を少なくすることができる。以下、本発明の実施の形態による不溶物判定技術について図面を参照しながら説明を行う。B/F分離を必要とするヘテロジニアスアッセイ系において、B/F分離とは抗体結合磁性粒子に反応した抗原と未反応な遊離抗原を洗浄分離する方法である。まず、本発明の一実施の形態によるB/F分離部と測光部とを有する免疫測定装置について説明する。図1は、本発明の一実施の形態によるB/F分離を含む免疫測定の流れを示す概要図である。図1については前述したため、説明を省略する。図2Aは、本発明の一実施の形態による免疫測定装置の概略構成を示す斜視図である。図2Bは、本発明の一実施の形態による免疫測定装置の概略構成を示す分解斜視図である。また、本実施の形態による免疫測定装置Aには、反応容器1を1本ずつ自動的に装置に供給するオートセルフィーダー37と、インキュベーションを行うためのインキュベーションテーブル39と、B/F分離処理を行うためのB/F分離機構41と、不溶物の検出を行う検出ユニット不溶物検出部45と、を有する。図3は、本発明の一実施の形態による免疫測定装置の概略構成例を示す平面図である。図3に示すように、本発明の一実施の形態による免疫測定装置Aを上面からみると、例えば、反応容器1内に検体を分注するサンプル分注部20と試薬を分注する試薬分注部150または223、検体試薬が分注された反応容器1内の1次または2次免疫反応液を攪拌する反応容器攪拌部47または55aと、1次または2次免疫反応を行うインキュベーションテーブル143及び244と、試薬を保冷する試薬保冷部51と、反応容器を搬送する反応容器搬送部57と、試薬ノズル洗浄槽61と、不溶物の検出を行う不溶物検出部測光部63と、測光部63で不溶物が検出され排出または廃棄すべき検体を反応容器1毎排出または廃棄する廃棄部64と、測光部63で不溶物が検出されずに排出または廃棄しないでB/F分離をすべき検体のB/F分離処理を行うB/F分離部65と、B/F分離処理における洗浄液1、2を吐出するB/F分注部167、269と、B/F洗浄部65aと、試薬ノズルを洗浄する試薬ノズル洗浄槽70と、シグナルを検出する検出部97と、シグナル検出後の反応容器1毎を廃棄する廃棄部64と、を有している。尚、上記構成のうちのいずれかを他の構成で置換したり、一部の構成を他の装置に持たせたりすることが可能である。装置の動作について説明する。図4は、本発明の一実施の形態による免疫測定装置の要部の概略構成を示す図である。図4aに示すように、反応容器搬送部57により、反応容器1が測光部63内に挿入され、Z軸方向に移動させながらLED発光の透過光を受光素子により測定して、不溶物量に依存する受光素子の電圧又は吸光度を求める。求めた電圧又は吸光度に基づいて、あるしきい値を超える反応容器は、透明であり不溶物なしとして、検体として利用することができる。あるしきい値を超えない反応容器は、不溶物ありと判断して、検体として利用できないため、廃棄部64に排出または廃棄する。図5は、本発明の一実施の形態による免疫測定装置のうち、不溶物検出部測光部63の詳細な構成例を示す図である。反応容器搬送部57は、反応容器1を把持し、上下Z軸方向に移動させることができる。不溶物検出部63は、空洞63aを有しており、空洞63aの内壁の反応容器1を挟んで対向する位置に、発光部LED81と、受光部フォトダイオード、PD85と、を配置している。そして、LED発光部81からの発光は、反応容器1の中心部を透過してPD受光部85に照射される。照射された光は、PD85において、受光する光量に依存する電圧に変換され、吸光度を求めることができる。電圧が高いほど、検体中の不溶物が少ない、すなわち吸光度が低い。従って、受光素子の電圧又は吸光度により、検体中の不溶物量を推定することができる。図6は、本発明の一実施の形態による免疫測定装置の概略構成例を示す機能ブロック図である。まず、反応容器1内の検体は、前処理部91において前処理が行われ、次いで、1次免疫反応後、不溶物検出部63で測光される。次いで、不溶物検出部63における測光結果に基づいて、不溶物判定部95でノズルの詰まりが生じるような不溶物の有無を判定し、そのような不溶物がない場合には、B/F分離部65でB/F1分離を行う。次いで、2次免疫反応後、B/F分離部65でB/F2分離を行い、検出部97でシグナル量の分析を行い、抗原、抗体の定量及び定性分析を行う。ここで、不溶物判定部95は、しきい値記憶部96に予め記憶していたしきい値又はしきい値入力部98から入力されたしきい値等との比較結果に基づいてノズル詰まりの可能性を判定する。次に、不溶物判定の具体的な処理内容について説明する。ノズル径が0.6~0.8mmであるため、それよりも少し大きい径を持つ沈殿物を入れた標準モデル検体を、ノズルを詰まらせる不溶物の標準試料として用いることができる。実施例1図7は、反応容器1のz軸に沿ったスキャンのタイミングと赤LED、緑LED、青LEDのそれぞれにおけるPDの出力電圧LED光の透過率に対応の関係を、沈殿物無し、少量から多量のそれぞれについて測定した図である。図7より沈殿物の程度におけるスキャン期間中の電圧の和電圧積算値を求めることができる。同様に、LED緑、LED青についてもスキャン期間中の電圧の和電圧積算値を求めると表1のようになる。0.5msにて、例えば288ポイントを測光している。実装置のデータでLEDの切替えをする際は、288ポイントを測光するLEDの数で割った分、つまり赤と緑の2つであれば144ポイントずつになる。測光部のみの簡易装置では、各波長において288ポイントを測光することが可能である。表1では、LED赤、LED緑、LED青のいずれの場合でも、スキャン中の電圧の和電圧積算値は、沈殿物の量とともに減少することがわかる。ここで、沈殿物無しと少量との間にノズル詰まりに関する電圧積算値のしきい値があることから、表2に示すように、各色のLEDにおけるノズル詰まりに関する電圧積算値のしきい値は、それぞれ、35000、25000、20000と求めることができる。これらのしきい値以下であると、ノズル詰まりが生じることになる。このしきい値が、以下に説明する同様の検体における、ノズルを詰まらせるか否かの判定の基準値となる。この基準値を、しきい値記憶部96に記憶しておく。或いは、しきい値入力部98から入力しておく。図8は、標準モデル検体を用いた測光結果を示す図であり、図7に対応する図である。図8aは赤色LEDを、bは緑色LEDを、cは青色LEDを用いた場合の、受光部フォトダイオードの受光強度に依存する吸光度と、反応容器のz方向へのスキャンタイミングとの関係を示す図である。図8より沈殿物の量におけるスキャン中の吸光度の積算値を求めることができる。同様に、LED緑、LED青についてもスキャン中の吸光度の和積算値を求めると表3のようになる。沈殿物の有無における積算値のしきい値が求まる。同様に、LED緑、LED青についても求めると以下のようになる。吸光度を基準にする場合には、LED赤、LED緑、LED青のしきい値は、表4に示すように150000、160000、350000であることがわかる。これらのしきい値以上であると、ノズル詰まりが生じることになる。このしきい値も、以下に説明する同様の検体における、ノズルを詰まらせるか否かの判定の基準値となる。この基準値を、しきい値記憶部96に記憶しておく。或いは、しきい値入力部98から入力しておく。実施例2図9は、モデル検体を用いた免疫反応に用いられる反応容器群の一例を示す図である。モデル検体1として、ヒト正常血清にBovineγGBGGを添加し、疑似的高タンパク血清を作製し、前処理を実施したものを用いた。図9の左側の反応容器から順番に、NHS、0.5BGG、1BGG、2BGG、4BGG、6BGG、8BGG、10BGGの酸アルカリ前処理後の様子を示す図であり、ある反応容器には不溶物の白濁が発生していることがわかる。不溶物の検出は、LED光を反応容器の底部から上部に向けて走査照射し受光素子により受光させて、反応容器を透過する透過光量に依存する受光素子の電圧の値を積算する。表5は、LED赤、LED緑、LED青に関する、NHS、0.5BGG、1BGG、2BGG、4BGG、6BGG、8BGG、10BGGのスキャン中の電圧の和電圧積算値を示す表である。表6より、LED赤、LED緑、LED青に関するしきい値として、35000、25000、20000がしきい値記憶部96に記憶されている表2と同じ値。このしきい値を参照して、実際に図10で求めた値から、それぞれ、しきい値以上の電圧積算値は、LED赤で1BGG、LED緑で0.5BGG、LED青でも0.5BGGとなり、これらの結果より、1BGGから0.5BGGの検体は、ノズルを詰まらせない可能性が高い検体であると判断することができる。この測光結果より、安全を見込めば0.5BGGの検体までをB/F分離処理に用い、それ以上の高濃度のBGG検体は排出または破棄することになる。図11は、モデル検体を用いた測光結果を示す図であり、aは赤色LEDを、bは緑色LEDを、cは青色LEDを用いた場合の、吸光度と反応容器のz方向へのスキャンタイミングとの関係を示す図である。表7は、LED赤、LED緑、LED青に関する、NHS、0.5BGG、1BGG、2BGG、4BGG、6BGG、8BGG、10BGGのスキャン中の吸光度積算値を示す表である。表8よりLED赤、LED緑、LED青に関するしきい値として、150000、160000、350000がしきい値記憶部96に記憶されている表4と同じ値。このしきい値を参照して、実際に図11で求めた値から、それぞれ、しきい値以下の吸光度積算値は、LED赤で1BGG、LED緑で0.5BGG、LED青でも0.5BGGとなり、これらの結果より、1BGGから0.5BGGの検体は、ノズルを詰まらせない可能性が高い検体であると判断することができる。この測光結果より、安全を見込めば0.5BGGの検体までをB/F分離処理に用い、それ以上の高濃度のBGG検体は排出または廃棄することになる。電圧積算値でも吸光度の積算値でも同様の結果が得られている。このようにして、NHS、0.5BGGの各検体について、実際にB/F分離でノズルを詰まらせることなく処理を行うことができることがわかる。すなわち、これらの検体は、ノズル詰まりを生じさせないものであり、B/F分離を行っても良い検体であると言える。実施例3図12は、実検体を用いた免疫反応に用いられる反応容器群の一例を示す図である。実検体として、高タンパク血漿検体を用いている。図12の左側の反応容器から順番に、ヒト正常血清、残り6反応容器が、酸アルカリ前処理後、多様な不溶物が発生した様子を示しており左から4、6、39、43、72、82である、不溶物の白濁が発生していることがわかる。不溶物の検出はLED光を反応容器に走査照射し受光させて、光量に依存する受光素子の電圧の値を積算する。図13は、実検体を用いた測光結果を示す図であり、aは赤色LEDを、bは緑色LEDを、cは青色LEDを用いた場合の、受光部フォトダイオードの受光強度に依存する電圧と、反応容器のz方向へのスキャンタイミングとの関係を示す図である。図13より、各種検体におけるスキャン中の電圧の和電圧積算値を求めることができる表9。また、表10は、表2に対応する表である。表9と表10より、この検体では、NHS以外の検体では、しきい値以下の電圧積算を有しており、これらの検体は不溶物を含みノズルを詰まらせる可能性がある検体であることがわかる。図14は、実検体を用いた測光結果を示す図であり、aは赤色LEDを、bは緑色LEDを、cは青色LEDを用いた場合の、吸光度と反応容器のz方向へのスキャンタイミングとの関係を示す図である。図14より、各種検体におけるスキャン中の吸光度の積算値を求めることができる表11。また、表12は、表4に対応する表である。表11と表12より、この検体では、NHS以外の検体では、しきい値以上の吸光度積算値を有しており、これらの検体は不溶物を含みノズルを詰まらせる可能性がある検体であることがわかる。この結果は、図13の結果と同様である。以上のように、ノズル径よりも少しだけ大きい径を有する沈殿物に関する、積算電圧、又は、吸光度積算値に基づいて求めたしきい値を記憶しておき、このしきい値に基づいて、実際の検体のB/F分離処理前の測光処理においてその検体の積算値が上記しきい値よりも大きいか否かに基づいて、ノズルを詰まらせるような検体であるか否かを測光部において判定することができる。従って、B/F分離処理前に、非破壊的に検体内の不溶物の有無を調べることができ、B/F分離処理におけるノズル詰まりを未然に防止することができる。このように、B/F分離を含む免疫測定装置において、B/F分離処理における不溶物に起因するノズル詰まりを防止し、また、不溶物に起因するB/F分離処理が不完全になることを抑制して、対象物質の濃度などの測定結果が偽陽性になったり、偽陰性になったりすることによる、医療過誤の要因を少なくすることができる。次に、共存物質の影響について説明する。検体には、直接型ビリルビン、抱合型ビリルビン、乳び、溶血Hbの共存物質が混入している場合が多く、これらが不溶物検出処理に影響を与える可能性がある。以下に、共存物質の影響を考慮した免疫測定技術の例について説明する。実施例4図15は、共存物質を含む検体の測光結果を示す図であり、aは赤色LEDを、bは緑色LEDを、cは青色LEDを用いた場合の、受光部フォトダイオードの受光強度に依存する電圧と、反応容器のz方向へのスキャンタイミングとの関係を示す図である。共存物質としては、NHS、Bil-FL約4mg/dL、Bil-FH約20mg/dL、Bil-CL約4mg/dL、Bil-CH約20mg/dL、乳びL約280濁度、乳びH約1400濁度、HbL約95mg/dL、HbH約480mg/dLを例として測定している。表13は測定結果を示すものであり、表14は表2に対応し、電圧変換の場合のしきい値を示す。表13は、電圧積算の結果を示す図である。この表13を見るとわかるように、LED緑、LED青では、しきい値を超えないものが多く、実際には共存物質は検体中に含まれてB/F分離処理が行われるべきであるにもかかわらず、共存物質が含まれることでしきい値以下の積算値とされて排出または廃棄対象となってしまうという問題がある。そこで、光源のLEDとしては、LED赤を用いることが好ましい。さらに、LED赤を用いても、HbL、HbHは、しきい値で、共存物質であるか否かを判定できない。そこで、測光部63の第1のPD85可視光用に加えて、同様の第2のPDに赤色のみを透過するフィルタを付けることで赤色であることを検出し或いは目視により検出し、2つの第1及び第2のPDの測定結果から、第1のPDでしきい値以下であるが、第2のPDで赤色であることを検出すると、これを、HbL、HbHの共存物質と判定するようにすると良い。このようにすれば、共存物質を含む検体を不溶物として除去することを防止することができる。目視で判定することもできる。図16は、共存物質を含む検体の測光結果を示す図であり、aは赤色LEDを、bは緑色LEDを、cは青色LEDを用いた場合の、吸光度と反応容器のz方向へのスキャンタイミングとの関係を示す図である。表15は測定結果を示すものであり、表16は表4に対応し、吸光度の場合のしきい値を示す。LED緑、LED青では、しきい値を超えるものが多く、実際には共存物質は検体中に含まれてB/F分離処理が行われるべきであるにもかかわらず、共存物質が含まれることでしきい値以上の吸光度積算値とされて排出または廃棄対象となってしまうという問題がある。そこで、上記の場合と同様に、LEDとしては、LED赤を用いることが好ましい。さらに、LED赤を用いても、HbL、HbHは、しきい値で、共存物質であるか否かを判定できない。そこで、測光部63の第1のPD85可視光用に加えて、同様の第2のPDに赤色のみを透過するフィルタを付けることで赤色であることを検出し或いは目視により検出し、2つの第1及び第2のPDの測定結果から、第1のPDでしきい値以下であるが、第2のPDで赤色であることを検出すると、これを、HbL、HbHの共存物質と判定するようにしても良い。このようにすれば、吸光度測定の場合でも、共存物質を含む検体を不溶物として除去することを防止することができる。実施例5図17は、免疫測定装置実装置を用いた測光結果の図であり、赤色LEDを用いた場合における、aはNHS、0.5BGG、1BGG、2BGG、4BGG、6BGG、8BGG、10BGGのスキャン中の電圧の和電圧積算値を示す表である。bは、沈殿物なし、少から多の場合の測定結果を示す図であり、cは、NHSと、種々の検体の測定結果を示す図である。表18は、沈殿物0NHSと少の場合の間の20000にしきい値を設定する。そして、表17に示す測定結果より、1BGGの場合が、ノズルの詰まらせない限界であると判定することができる。さらに、4から82までの表示されている全ての検体がしきい値を超えておらず、不溶物によるノズル詰まりを生じさせる可能性がある検体であることがわかる。図18は、免疫測定装置を用いた測光結果の図であり、aはNHS、0.5BGG、1BGG、2BGG、4BGG、6BGG、8BGG、10BGGのスキャン中の吸光度の和吸光度積算値を示す表である。bは、沈殿物なし、少から多の場合の測定結果を示す図であり、cは、NHSと、種々の検体の測定結果を示す図である。同様に沈殿物0と少との間の吸光度のしきい値として400000が求められる表20。この値を元に、表19に示すように、1BGGの場合が、ノズルの詰まらせない限界であると判定することができる。さらに、4から82までの表示されている全ての検体がしきい値を超えており、不溶物によるノズル詰まりを生じさせる検体であることがわかる。実施例6図19は、免疫測定装置を用いた共存物質のモデル検体として血漿/血清の実検体を用いた場合の測光結果を示す図であり、a共存物質のモデル検体、bは乳び血漿、cはHb血漿の、受光部フォトダイオードの電圧と、反応容器のz方向へのスキャンタイミングとの関係を示す図である。上記で求めた表18の、沈殿物0NHSと1個の場合の間の20000をしきい値とすると、表21のうち、HbH以外は全て、不溶物でないと判断される。尚、HbHは、本来は共存物質であるが、上記と同様に、LED赤を用いても、HbL、HbHは、しきい値で、共存物質であるか否かを判定できない。そこで、測光部63の第1のPD85可視光用に加えて、同様の第2のPDに赤色のみを透過するフィルタを付けることで赤色であることを検出し或いは目視により検出し、2つの第1及び第2のPDの測定結果から、第1のPDでしきい値以下であるが、第2のPDで赤色であることを検出すると、これを、HbL、HbHの共存物質と判定するようにしても良い。また、図20は、免疫測定装置を用いた共存物質のモデル検体として血漿/血清の実検体を用いた場合の測光結果を示す図であり、赤色LEDを用い、a共存物質のモデル検体、bは乳び血漿、cはHb血漿の、受光部フォトダイオードの吸光度と、反応容器のz方向へのスキャンタイミングとの関係を示す図である。この場合には、表24に示す400000のしきい値表20に対応を利用して、全ての血清血漿、等の共存物質を、ノズル詰まりのない物質として判定することができる。実施例7次に、実際の装置を用いて検体を測定するための処理の流れについて、いくつかの例について、より具体的に説明する。図21は、1ステップ法による免疫測定法の流れを示すフローチャート図である。この1ステップ法では、酵素標識物、サンプル検体、磁性粒子を分注しステップS1、攪拌/インキュベーション37°Cを行いステップS2、次いで、不溶物測光LED:するしないの選択を行いステップS3、不溶物測光をする場合で測光結果が不溶物無しであれば、B/F分離洗浄操作集磁、反応液吸引/洗浄液分注、攪拌を行うステップS4。次いで、発光試薬1を入れて攪拌を行いステップS5、発光試薬2基質を入れステップS6、発光量の測定を行うステップS7。これにより、B/F分離処理前にノズル詰まりの可能性を判定し、ノズル詰まりを未然に防ぐことが出来る。実施例8図22は、ディレイド1ステップ法による免疫測定法の流れを示すフローチャート図である。すなわち、免疫反応溶液、サンプル検体、磁性粒子を分注するステップS11。次いで、攪拌/インキュベーション37°Cを行いステップS12、酵素標識物を添加しステップS13、攪拌/インキュベーション37°Cを行うステップS14。次いで、不溶物の測光処理LEDをするしないの選択を行いステップS15、不溶物測光をする場合で測光結果が不溶物無しであれば、B/F分離洗浄操作集磁、反応液吸引/洗浄液分注、攪拌を行うステップS16。さらに、発光試薬1を添加して攪拌しステップS17、発光試薬2基質を入れてステップS18、発光量の測定を行うステップS19。これにより、B/F分離処理前にノズル詰まりの可能性を判定し、ノズル詰まりを未然に防ぐことが出来る。実施例9図23は、2ステップ法1による免疫測定法の流れを示すフローチャート図である。免疫反応溶液、サンプル検体、磁性粒子を分注しステップS21、攪拌/インキュベーション37°Cを行うステップS22。次いで、不溶物の測光処理LEDをするしないの選択を行いステップS23、不溶物測光をする場合で測光結果が不溶物無しであれば、B/F分離洗浄操作集磁、反応液吸引/洗浄液分注、攪拌を行うステップS24。酵素標識希釈液と酵素標識物を添加するステップS25。さらに、攪拌/インキュベーション37°Cを行いステップS26、B/F分離洗浄操作集磁、反応液吸引/洗浄液分注、攪拌を行うステップS27。次いで、発光試薬1を入れ攪拌しステップS28、発光試薬2基質を用いてステップS29、発光量の測定を行うステップS30。これにより、B/F分離処理前にノズル詰まりの可能性を判定し、ノズル詰まりを未然に防ぐことが出来る。実施例10図24は、2ステップ法2による免疫測定法の流れを示すフローチャート図である。まず、免疫反応溶液1、免疫反応溶液2を分注しステップS31、攪拌した後、サンプル検体、磁性粒子を混ぜるステップS32。次いで、攪拌/インキュベーション37°Cを行うステップS33。次いで、不溶物の測光処理LEDをするしないの選択を行いステップS34、不溶物測光をする場合で測光結果が不溶物無しであれば、B/F分離洗浄操作集磁、反応液吸引/洗浄液分注、攪拌を行うステップS35。次いで酵素標識希釈液、酵素標識物を混ぜてステップS36、攪拌/インキュベーション37°Cを行うステップS37。次いで、B/F分離洗浄操作集磁、反応液吸引/洗浄液分注、攪拌を行いステップS38、発光試薬1を加えて攪拌するステップS39。そして、発光試薬2基質を用いてステップS40、発光量の測定を行うステップS41。これにより、B/F分離処理前にノズル詰まりの可能性を判定し、ノズル詰まりを未然に防ぐことが出来る。実施例11図25は、前処理付き2ステップ法による免疫測定法の流れを示すフローチャート図である。この方法は、前処理の自動化を含む2ステップ法である。まず、前処理液と、サンプル検体とを用いステップS51攪拌/インキュベーション37°Cを行うステップS52。次いで、免疫反応溶液を混ぜてステップS53、攪拌し、磁性粒子を混ぜてステップS54、攪拌/インキュベーション37°Cを行うステップS55。次いで、不溶物の測光処理LEDをするしないの選択を行いステップS56、不溶物測光をする場合で測光結果が不溶物無しであれば、B/F分離洗浄操作集磁、反応液吸引/洗浄液分注、攪拌を行うステップS57。次いで、酵素標識希釈液、酵素標識物を用いステップS58、攪拌/インキュベーション37°Cを行うステップS59。次いで、B/F分離洗浄操作集磁、反応液吸引/洗浄液分注、攪拌を行うステップS60。さらに、発光試薬1を混ぜてステップS61攪拌し、発光試薬2基質を用いてステップS62、発光量の測定を行うステップS63。これにより、B/F分離処理前にノズル詰まりの可能性を判定し、ノズル詰まりを未然に防ぐことが出来る。実施例12図26は、前希釈付き2ステップ法による免疫測定法の流れを示すフローチャート図である。まず、検体希釈液とサンプル検体を分注しステップS71、攪拌した後、免疫反応液、希釈済み検体を混ぜてステップS72攪拌する。次いで、磁性粒子を加えステップS73、攪拌/インキュベーション37°Cを行うステップS74。次いで、不溶物の測光処理LEDをするしないの選択を行いステップS75、不溶物測光をする場合で測光結果が不溶物無しであれば、B/F分離洗浄操作集磁、反応液吸引/洗浄液分注、攪拌を行うステップS76。次いで、酵素標識希釈液、酵素標識物を混ぜステップS77、攪拌/インキュベーション37°Cを行うステップS78。さらに、B/F分離洗浄操作集磁、反応液吸引/洗浄液分注、攪拌を行いステップS79、発光試薬1を混ぜて攪拌するステップS80。発光試薬2基質を用いてステップS81、発光量の測定を行うステップS82。これにより、B/F分離処理前にノズル詰まりの可能性を判定し、ノズル詰まりを未然に防ぐことが出来る。以上に説明したように、本実施の形態による免疫測定装置によれば、前処理の有無、項目試薬数、などに依存せずに、種々の方法において、非破壊的に、不溶物の検出を行った後に、B/F処理を行うため、B/F分離を含む免疫測定装置において、B/F分離処理における不溶物に起因するノズル詰まりを防止し、また、不溶物に起因するB/F分離処理が不完全になることを抑制して、対象物質の濃度などの測定結果が偽陽性になったり、偽陰性になったりすることによる、医療過誤の要因を少なくすることができる。上記の実施の形態において、添付図面に図示されている構成等については、これらに限定されるものではなく、本発明の効果を発揮する範囲内で適宜変更することが可能である。その他、本発明の目的の範囲を逸脱しない限りにおいて適宜変更して実施することが可能である。