神経様に分化したPC12細胞を被験水に所定期間暴露する工程と、当該所定期間経過後に、前記神経様に分化したPC12細胞の生存率を測定する工程とを有することを特徴とする水質評価方法。請求項1に記載の水質評価方法において、前記神経様に分化したPC12細胞は、NGF含有の培地で培養されかつ樹状突起を有することを特徴とする水質評価方法。請求項1に記載の水質評価方法において、前記生存率の測定は、色素法、コロニー形成試験法、MTT法試験法のいずれかの試験法により測定されることを特徴とする水質評価方法。従来の生態系における水質評価魚による水環境評価試験はあくまでも魚に対する健康リスクを調べたものであり、人との種間差が大きいため、結果を人健康へ直接あてはめることは難しい。また、水のように未知の混合物が含まれる被験物質への培養細胞の適用例は極めて少ない。また細胞種によって有害性の現れ方や程度が異なるといった問題も残されている。また、地下水汚染などで問題となっているクロムヒ素鉛に共通の特定標的臓器として、中枢神経系が挙げられるが、これらの有害性を検出するために、ヒト神経細胞を培養して使用することが考えられる。しかしながら、ヒトの神経細胞を簡便かつ安定的に培養することは困難であり、結果的に神経系の有害性を簡単に検出できないといった課題がある。上記目的を達成するための本発明の一例としては、神経有害物質を含む水の有害性評価に対して、神経様に分化したPC12細胞を適用し、被験水を細胞に処理して、PC12細胞の生死を指標に有害性を検出する評価方法を提供する。神経有害物質を含む水の有害性評価では、ヒト由来ではないが、ヒトと同じ哺乳類であるラット由来のPC12細胞を用いることで、ヒトの神経細胞と異なり一般的な培養方法で安定的に培養することがでる。以下に添付図面を参照して、本発明の実施形態を説明する。なお、この実施の形態は一例にすぎず、本発明を限定するものではない。図1は本発明に関わる分化したPC12細胞を用いた神経有害性物質を含む水質評価の手順を説明するフロー図であり、S1~S4の4工程で構成される。<S1:細胞の維持と分化>PC12細胞の維持は、通常の哺乳類細胞培養法により培養できる。培養液はウマ血清とウシ胎児血清を含むRPMI1640を使用した。神経様分化は、神経成長因子NerveGrowthFactor:以下NGFと示すを予め、01ウシ血清アルブミン含有リン酸バッファーPhosphateBufferedSalinepH74で溶解し、培地交換と継代時に培地に添加した。NGF含有の培地で1週間以上培養し、樹状突起が伸びたものを分化したPC12細胞とし、NGF添加条件で継代を週2回行った。<S2:被験水からの培養液調製>細胞を暴露する被験水は、適宜濃縮操作を行った後に022μmのフィルターでろ過し、滅菌を行う。濃縮作業は必須ではないが、明らかな高濃度汚染地域でない限り、濃縮水を含めた希釈系列で評価することが望ましい。次に、粉末培地を溶解してpHを72に調整し、液体培養液を調製する。<S3:被験水による細胞処理暴露>S1で継代培養されている細胞を一定量播種し、その後、被験水で作られた培養液を添加して培養を続け、24~96時間、細胞を暴露する。<S4:有害性評価>S3の細胞処理後に細胞の生存率を求め、有害性を評価する。細胞生存率の測定には従来法を用いることができる。細胞の生存率の測定には細胞膜の透過性を指標として調べる色素法、増殖能を調べるコロニー形成試験法、MTTメチルチアゾールテトラゾリウムがミトコンドリアの酸化的リン酸化能に伴い還元、分解される現象を利用して細胞の生存率を出すMTT法試験法などが利用できる。例えばニュートラルレッド法の場合、ニュートラルレッド含む培養液に交換し、さらに2~3時間培養することで、細胞にニュートラルレッドを取り込ませ、取り込み量を測定する。取り込み量を測定するためには、通常、以下の後処理を行う。すなわち、ニュートラルレッド含む培養液を除去後、塩化カルシウム含有ホルマリン溶液例えば、塩化カルシウム1含有1ホルマリン溶液を添加して培養細胞を固定し、さらに上清を除去することによって、細胞に取り込まれないニュートラルレッドを除去し、ついで酢酸含有エタノール例えば、酢酸1含有50エタノールを添加することによって、生細胞に取り込まれたニュートラルレッドを抽出する。該抽出液に含まれるニュートラルレッドの量は常法、例えば比色法や分光光度法等によって測定すればよいが、分光光度計を用いて吸光度、例えば540nmにおける吸光度を測定する方法が簡便である。ニュートラルレッドは可溶性の色素で、生細胞のみ細胞内に取り込むことが出来る物質である。毒性によって細胞増殖が抑制された場合、あるいは細胞死が誘発され細胞数が減少した場合には、ニュートラルレッドの取り込みが減少する。したがって、洗浄後に細胞に取り込まれたニュートラルレッドを測定することで、対照群に対する相対的な生細胞数を推定することができ、被験水の有害性を判定することが可能である。以下に、本発明の分化したPC12細胞を用いた神経有害性物質を含む水の評価法と結果ついて説明するが、本発明は以下の適用例に限定されるものではない。適用例1<被験水の培養液調製>模擬的に作製した被験水を用い、細胞有害性を検出した例を示す。地下水汚染物質であるクロムを用いて、細胞有害性を評価した。模擬水は純水に二クロム酸カリウムを溶解して作製し、それを用いて培地を作製した。クロムの濃度は化合物の分子量から換算して算出した。S1で継代培養されている神経細胞様に分化したPC12細胞と比較対照として、NGFを添加せずに培養した未分化のPC12細胞と一般的な培養細胞であるヒト肝臓がん由来細胞HepG2を用いた。<細胞処理>分化したPC12細胞未分化のPC12細胞HepG2細胞を96ウェルの培養プレートに、1×104cells100μLとなるように細胞を播種する。その後、模擬被験水のクロム濃度が0コントロールと03mgLになるように調整し、37°C、5CO2環境下で24時間培養した。<細胞有害性評価>ニュートラルレッドアッセイにより生細胞数を測定し、対照培養液の生細胞数を100とした相対細胞生存率を算出した。具体的には、被験水で調製した培養液を除去し、150μgmlの濃度でニュートラルレッド含む培地に交換し、さらに2~3時間培養することで、細胞にニュートラルレッドを取り込ませた。その後、ニュートラルレッド含む培養液を除去し、塩化カルシウム1含有1ホルマリン溶液を添加して培養細胞を固定し、さらに上清を除去することによって、細胞に取り込まれないニュートラルレッドを除去し、ついで酢酸1含有50エタノールを添加することによって、生細胞に取り込まれたニュートラルレッドを抽出した。分光光度計を用いて540nmにおける吸光度を測定し、抽出液に含まれるニュートラルレッドの量を測定した。ニュートラルレッド法では、生細胞のみが細胞内にニュートラルレッドを取り込むため、ニュートラルレッドの吸光度を生細胞数とみなすことができる。対照培養液の吸光度を100として相対値を求め、被験水処理群の相対生存率を求めた。図2に示す通り、クロムは神経有害性物質であるので、神経様に分化したPC12細胞を用いることで、未分化のPC12細胞や、毒性試験等でよく使用されるHepG2細胞より生存率は低く、クロムの細胞有害性を高感度に検出できることが確認された。適用例2適用例1と同様に模擬的に作製した被験水を用い、有害性を検出した例を示す。地下水汚染物質であるヒ素を用いて、細胞有害性を評価した。模擬水は純水に亜ヒ酸ナトリウムを溶解して作製した。被験水の培養液調製、細胞処理、細胞有害性評価手順は適用例1と同様に行った。ただし、ヒ素濃度は0コントロールと1mgLになるように調整した。図3に示す通り、ヒ素はクロムと同様に神経有害性物質であるので、神経様に分化したPC12細胞を用いることで、未分化のPC12細胞やHepG2細胞より生存率は低く、ヒ素の場合でも細胞有害性を高感度に検出できることが確認された。適用例3適用例1と同様に模擬的に作製した被験水を用い、有害性を検出した例を示す。地下水汚染物質である鉛を用いて、細胞有害性を評価した。模擬水は純水に酢酸鉛を溶解して作製した。被験水の培養液調製、細胞有害性評価手順は適用例1と同様に行った。ただし、被験水の培養液調製において、細胞処理の播種する細胞数を2×103cells100μLで行い、鉛濃度は0コントロールと80mgLになるように調整し、暴露時間は96時間で行った。図4に示す通り、鉛はヒ素やクロムと同様に神経有害性物質であるので、神経様に分化したPC12細胞を用いることで、未分化のPC12細胞より生存率は低く、鉛の場合でも細胞有害性を高感度に検出できることが確認された。適用例4適用例1と同様に模擬的に作製した被験水を用い、本発明の特徴を確認した例を示す。地下水汚染物質であるが、特定標的部位に神経を含まない亜鉛を用いて、細胞有害性を評価した。模擬水は純水に硫酸亜鉛を溶解して作製した。被験水の培養液調製、細胞処理、細胞有害性評価手順は適用例1と同様に行った。ただし、亜鉛濃度は0コントロールと20mgLになるように調整した。図5に示す通り、亜鉛はヒ素やクロムと異なり、神経有害性物質ではないので、神経様に分化したPC12細胞を用いても、未分化のPC12細胞やHepG2細胞と比較して、生存率があまり変わらなかった。すなわち、神経が標的部位でない物質の場合、分化したPC12細胞における細胞有害性が高感度になることはなく、神経が標的部位である場合のみ、分化したPC12細胞における細胞有害性の感度が特異的に高く検出できるという本発明の特徴が確認された。適用例5適用例1と同様に模擬的に作製した被験水を用い、有害性を検出するのに適した細胞数を検討した例を示す。地下水汚染物質である鉛を用いて、細胞有害性を評価した。模擬水は純水に酢酸鉛を溶解して作製した。被験水の培養液調製、細胞有害性評価手順は適用例1と同様に行った。ただし、細胞処理の播種する細胞数を、1×1032×1035×1031×1045×104cells100μLにし、鉛濃度は80mgL、暴露時間は96時間で行った。図6に示す通り、細胞数が少ない方が細胞有害性を高感度に検出できることが確認された。上述したような本願発明および適用例によって、ヒト由来ではないが、ヒトと同じ哺乳類であるラット由来のPC12細胞を用いることで、ヒトの神経細胞と異なり一般的な培養方法で安定的に培養することができることが確認された。また、PC12細胞はNGFを培地に添加することで簡単に分化させることできる。さらに、神経細胞モデルとして使用されてきた実績があるPC12細胞を用いることで、神経有害性物質を含む水の有害性評価に対し、高感度に検出できるという利点がある。