"外観観察で水系にスライムが見出される場合には該水系にスライムコントロール剤を添加するスライムコントロール剤の薬注制御方法において、付着物の呼吸活性及び付着物の生物濃度を測定し、付着物の生物量あたりの呼吸活性を算出し、スライムが見出されず、かつ呼吸活性が所定値よりも小さい場合には薬注量を減少させ、スライムが見出されず、かつ呼吸活性が所定値よりも大きい場合には薬注量を増加させ、スライム量が増加したときには薬注量を増加させ、スライム量が非増加であるが呼吸活性が所定値よりも大きい場合には薬注量を増加させ、スライム量が非増加であり呼吸活性が所定値よりも小さい場合には薬注量を維持することを特徴とする薬注制御方法。請求項1において、呼吸活性はデヒドロゲナーゼ活性であることを特徴とする薬注制御方法。本発明は、水系のスライム状況と生物の活性とを総合的に勘案して適切なスライムコントロール剤の薬注制御を行うことができる薬注制御方法を提供することを目的とする。請求項1の薬注制御方法は、外観観察で水系にスライムが見出される場合には該水系にスライムコントロール剤を添加するスライムコントロール剤の薬注制御方法において、付着物の呼吸活性及び付着物の生物濃度を測定し、付着物の生物量あたりの呼吸活性を算出し、スライムが見出されず、かつ呼吸活性が所定値よりも小さい場合には薬注量を減少させ、スライムが見出されず、かつ呼吸活性が所定値よりも大きい場合には薬注量を増加させ、スライム量が増加したときには薬注量を増加させ、スライム量が非増加であるが呼吸活性が所定値よりも大きい場合には薬注量を増加させ、スライム量が非増加であり呼吸活性が所定値よりも小さい場合には薬注量を維持することを特徴とするものである。請求項2の薬注制御方法は、請求項1において、呼吸活性はデヒドロゲナーゼ活性であることを特徴とするものである。付着微生物の場合、増殖した菌体のうちの一部が残留して微生物層を形成する。そのため、付着微生物の増減は増殖の有無が支配因子と考えることができる。デヒドロゲナーゼの反応は電子転移反応、水素化物イオンH-転移反応、水素転移反応に分けられる。多種類の酵素が知られており、代謝中間体の酸化還元、呼吸発酵、膜電位の維持、能動輸送に関するものもある。呼吸は微生物増殖に欠かせないことから、この呼吸活性が微生物増殖の判断指標として有効である。本発明によれば、種々の水系における様々な微生物が形成する微生物膜に対するスライムコントロール剤の効果を明確に判断することができる。本発明では、現地にモニター用の装置を持ち込むことなく、スライムコントロールの良し悪しを簡易かつ迅速に判断することができる。本発明では、現在注入している薬品の濃度、添加頻度でスライムの増加を抑制できるかどうか判断することができる。また、現在注入している薬品の濃度が過剰であると判断された場合には薬品量を低下させることができる。本発明によれば、過剰又は過小なスライムコントロール剤注入を行うことなく、スライムコントロールを良好に維持することができる。以下、本発明についてさらに詳細に説明する。本発明は、水系に発生したスライムを外観観察によって検知すると共に、生物量当りのデヒドロゲナーゼ活性などの呼吸活性を測定して生物の増殖傾向を調べ、これらの結果に基いてスライムコントロール剤の薬注制御を行う。具体的には、図1のように、まず水系のスライム状況を所定期間観察し、判定するステップ1,2。スライムがなければ、薬注停止を維持し、ステップ3からステップ1に戻る。ステップ2において、スライムが観察されるときには、ステップ4に移り、最小量の薬注量にて薬注を行い、所定間隔例えば1回/週、特に1回/月で観察すると共に、生物量当りのデヒドロゲナーゼ活性DVAを測定した後、判定するステップ5,6。スライムが観察されず、かつ生物量当りのデヒドロゲナーゼ活性が基準値aよりも低ければ、薬注量を所定量減少させステップ7、ステップ5に戻る。なお、所定量減少させた薬注量が0以下になるのであれば、薬注停止とし、ステップ5に戻る。なお、スライムが採取されなければ、デヒドロゲナーゼ活性は基準値aよりも低い下限値以下となるので、薬注停止が継続する結果となる。ステップ6の判定の結果、スライムは観察されないが、生物量当りのDGAが所定値よりも大きいときには、薬注量を増加させステップ8、ステップ5に戻る。ステップ6の判定の結果、スライムが観察されるが、スライム量に変化がないか又は減少しており、かつDGAが所定値よりも小さいときには現状維持現状の薬注量維持としステップ9、ステップ5に戻る。スライムが観察されるが、スライム量に変化がないか又は減少しており、かつDGAが所定値よりも大きいときには薬注量を増加させステップ10、ステップ5に戻る。ステップ6の判定の結果、スライム量が増加しているときには、薬注量を所定量増加ステップ11させた後、ステップ5に戻る。このように、スライム量と生物量当りのデヒドロゲナーゼ活性値とを総合的に勘案することにより、必要最小限の薬注量にてスライムを防止することができる。上記のデヒドロゲナーゼ活性の測定は、薬注を間欠的に行っている場合、薬注終了時に行うのが好ましい。なお、水系としては、冷却水系、ガス処理用のスクラバーの水系特にスクラバーの用水を循環使用する場合に好適である。、紙パルプ製造工程水系、膜分離装置への通水系などが例示されるが、これらに限定されない。スライムコントロール剤としては、特に限定されることなく、各種のものを用いることができる。[基準値aの決定方法]上記の基準値aとは、デヒドロゲナーゼ活性がこの値よりも低いときには該水系における生物繁殖量が減少し、高いときには生物繁殖量が増加する境界値である。付着微生物が増減する生物量当たりのデヒドロゲナーゼ活性値等の呼吸活性は生物種や環境によって異なる。従って、対象とする付着微生物が対象とする環境で増加する場合と減少する場合との境界値aは、水系に応じて実験により見出す。[生物量あたりのデヒドロゲナーゼ活性測定手順]本発明で採用するのに好適な生物量あたりのデヒドロゲナーゼ活性測定手順について次に説明する。1スライムのサンプリングシリンジ20mLで冷却水ピット壁面のスライムを吸い取り、滅菌済みのチューブ50mL遠沈管などにサンプリングする。サンプル量は50mL程度採取する。肉眼でスライムが見い出せるレベル量あれば定量できる。22piodophenyl3pnitorophenyl5tetrazoliumchlorideとの反応INT染色1あらかじめ、超純水で0.22piodophenyl3pnitorophenyl5tetrazoliumchloride溶液を作成し、滅菌済みの容器にポアサイズ0.2μmで濾過する。4°C保存。2あらかじめ、PY培地ポリペプトン10g、酵母エキス10g、NaCl5gを1Lに含む培地:pH7.0±0.2、滅菌121°Cで15分を作成する。3INT溶液1/10vol.最終濃度約0.02滅菌メスピペットで採取、PY培地1/100vol.最終濃度1/100PY、滅菌メスピペットで採取混合液を超純水で作成し、滅菌済みの容器100mLポリ瓶、50ml遠沈管、滅菌済みガラスフラスコなどにポアサイズ0.2μmで濾過する濾過滅菌操作。この液をINT染色液と呼ぶ。作成量は1サンプルあたり5mL程度10mLで算出する。当日作成、使用後廃棄。4スライム懸濁液の蛋白濃度を測定する。5濾過器にポアサイズ0.45μmφ25mmニトロセルロースフィルターを設置する。6濾過量が蛋白量200mg~400mgになるように、スライム懸濁液量を算出し、10ml滅菌ピペットでサンプルを濾過器に供する。サンプルはよく攪拌しさらにピペッティングで攪拌する。できるだけ均一になるようにスライム懸濁液を採取し、吸引濾過する。ブランクとして滅菌水を用いる。-コントロールとしては同量のスライム懸濁液を濾過し、INT染色部分を除いてサンプルと同様の操作を行い抽出に供する。コントロールとしてはPputidaA660nm0.1の液を蛋白量として約200mg供する。7滅菌水10mlを添加し、濾過する。洗浄8INT染色液5mL添加。約1mL程度濾過して、フィルター上の菌に確実に接触させる。937°C、1時間、暗所静置10濾過したフィルターを濾紙などの上において乾燥させ、反応停止させる。軽い重石をおいて、フィルターが丸まらないようにする。11フォルマザンの抽出と吸光度測定をおこなう。フィルターをエッペンドルフチューブに入れる。1mLのクロロフォルムを添加し、約1時間攪拌する。光路1cmセルで490nm吸光度を測定する。3蛋白質濃度の定量蛋白質濃度の定量は、FolinCiocaltenのフェノール試薬による測定に基づいて行う。4値算出INTFormazan吸光度をDehydrogenaseActivityに換算活性の単位:一単位1unit1Uは1分間に1μmolの基質、または1μ当量の結合に作用する酵素量。この反応はINTが脱水素酵素Dehydrogenaseによって還元され当量のINTFormazanが形成されると考えられることから、1μmol/minのINTForumazan生成を1Uとする。酵素活性の単位にはUとkatがあるが、今回は一般に多用されているUnitを用いる。抽出液量から抽出されたINTFormazanモル数を算出し、反応時間で除算すると活性が算出される。DehydrogenaseActivity[U]=ミリモル濃度[mmol/L]×μモル換算[1000μmol/mmol]×抽出液量[L]/反応時間[min]=×1000×1/1000/60ミリモル濃度[mmol/L]=0.044×490nm吸光度-0.0004抽出液量1ml反応時間60minDehydrogenaseActivityから求める生物量当たりのデヒドロゲナーゼ活性は活性を分析に用いた蛋白量で除算した値を100000倍したものとする。生物量当たりのデヒドロゲナーゼ活性=DehydrogenaseActivity[U]/蛋白量[mg]×100000生物量当りのデヒドロゲナーゼ活性測定方法の別方法としては、たとえば活性を生物量で割る際に、タンパク質以外の量たとえばDNAなどを用いる方法がある。また、デヒドロゲナーゼ活性測定をINT以外の試薬電子受容により発色、発光する試薬で行うこともできる。また、呼吸活性をデヒドロゲナーゼ活性で求めているがそれ以外の方法たとえば微生物燃料電池の電位を用いることもできる。[実験例1]殺菌剤を添加することによる生物量当たりのデヒドロゲナーゼ活性の低下を確認するための実験を行った。サンプルは、電子産業の有機溶剤捕集用スクラバーの付着物懸濁液であり、蛋白質を27.2mg/Lasprotein含有している。試験条件は次の通りである。評価薬剤:有機臭素系殺菌剤主な有効成分濃度:0,175,325,450,650mg/L反応液:純水に薬剤を希釈し菌と接触薬品との接触時間:60分その後デヒドロゲナーゼ活性測定を実施試験フローは次の通りである。iサンプル2mL1.7mLをニトロセルロースフィルターポアサイズ0.45μmφ25mmで濾過する。ii10mL滅菌水デ濾過し、所定濃度のスライムコントロール剤クリセーフ355栗田工業株式会社製水溶液をアプライする。iii30°Cに1h静置した後、吸引濾過により薬剤除去し、10mLの滅菌水を濾過する。iv0.02INT溶液1/100PY培地含むアプライする。<ここからINT染色>v37°Cに1h静置した後、吸引濾過により溶液除去し、乾燥後、1mLクロロフォルム抽出1hを行い、490nm吸光度測定を行った。結果を図2に示す。図2の通り、スライムコントロール剤との接触によって、菌の活性は低下した。このことから、スライムコントロール剤によって、デヒドロゲナーゼ活性が阻害されることが明らかにされた。[実施例1]実機スクラバーに対して本方法を適用し、スクラバースライムの目視観察による増減評価と生物量当たりのデヒドロゲナーゼ活性の変動を測定した。測定対象は実機スクラバーの循環水タンク壁面の生育スライムである。外観観察は循環水タンク壁面について行い、生物量当たりのデヒドロゲナーゼ活性の測定は循環水タンク生育スライムについて行った。スライムコントロール剤クリセーフ355の濃度は1280mg/Lとし、薬注は2~3日に1回、10分間/回の間欠注入とした。対象としたスクラバーの外観観察と付着物のデヒドロゲナーゼ活性測定を3月~9月までの間、1~3回/月の割合で継続的に実施した。得られた値を、スライムコントロール管理指針フローに基づき判断した。対象としたスクラバーでは、薬注前のデヒドロゲナーゼ活性が設定値よりも高いため、スライムコントロール剤の注入が必要と判断され、月、水、金に薬注を行った。7月までは、薬注後のデヒドロゲナーゼ活性が設定値よりも低く、外観観察も良好であった。8月上旬に薬注後のデヒドロゲナーゼ活性が設定値よりも高く、スライムコントロールの悪化が予想された。8月中旬に外観が悪化し、隔日注入から毎日注入に変更すると、薬注後のデヒドロゲナーゼ活性が設定値以下に低下し、外観悪化も停止した。この結果から、本発明方法により過剰過小なスライムコントロール剤注入をすることなく良好なスライムコントロールがなされたと考えられる。"