グリシン合成系タンパク質の遺伝子及び又はメチオニン合成系タンパク質の遺伝子の発現機能を喪失させ、かつキシロース代謝酵素遺伝子を導入した微生物。前記グリシン合成系タンパク質の遺伝子がGLY1遺伝子である、請求項1に記載の微生物。前記メチオニン合成系タンパク質の遺伝子がMET6又はMET32遺伝子である、請求項1又は2に記載の微生物。酵母である、請求項1~3のいずれか1項に記載の微生物。サッカロミセスセレビシエである、請求項1~4のいずれか1項に記載の微生物。前記キシロース代謝酵素遺伝子が、キシロース還元酵素遺伝子、キシリトール脱水素酵素遺伝子及びキシルロースリン酸化酵素遺伝子からなる群より選択される少なくとも1つのものである、請求項1~5のいずれか1項に記載の微生物。グリシン合成系タンパク質の遺伝子及び又はメチオニン合成系タンパク質の遺伝子の発現機能を喪失させることにより、キシロース醗酵能力の増加した微生物を作製する方法。前記グリシン合成系タンパク質の遺伝子がGLY1遺伝子である、請求項7に記載の方法。前記メチオニン合成系タンパク質の遺伝子がMET6又はMET32遺伝子である、請求項7又は8に記載の方法。前記微生物が酵母である、請求項7~9のいずれか1項に記載の方法。前記微生物がサッカロミセスセレビシエである、請求項7~10のいずれか1項に記載の微生物。前記微生物がキシロース代謝酵素遺伝子が導入されたものである、請求項7~11のいずれか1項に記載の方法。前記キシロース代謝酵素遺伝子が、キシロース還元酵素遺伝子、キシリトール脱水素酵素遺伝子及びキシルロースリン酸化酵素遺伝子からなる群より選択される少なくとも1つのものである、請求項12に記載の方法。請求項1~6のいずれか1項に記載の微生物と、キシロース含有原料とを接触させる工程を含む、エタノールの製造方法。このような状況下、キシロースの醗酵能が向上した微生物の開発が必要とされる。本発明者らは、酵母ピキアスティピティスのキシロース還元酵素、キシリトール脱水素酵素遺伝子および、酵母サッカロミセスセレビジエのキシルロースリン酸化酵素遺伝子の発現カセットを導入することによって、キシロース醗酵性を付与した複数種類の酵母を用いて醗酵試験を行い、キシロースからのエタノール醗酵における細胞内代謝物のプロファイル分析を行った。得られたデータと、醗酵パフォーマンスを表す数値として、エタノール生成量速度収率と、キシロース資化量速度収率と、副生成物の生成量速度収率等とを比較し、データと~との相関関係を解析することにより、キシロースからエタノールへの代謝経路に属する物質、すなわち、キシリトール、キシルロース、キシルロース5リン酸、およびペントースリン酸回路と解糖系に属する中間代謝物以外の新たな物質と、エタノール醗酵パフォーマンスとの関連を見出して、育種ターゲットとなる遺伝子を決定し、その遺伝子に関する育種を行った。その結果、グリシン生合成経路の遺伝子GLY1を破壊することにより、キシロースの資化速度が上昇することが判明した。また、メチオニン生合成経路の遺伝子、MET6あるいはMET32を破壊することにより、副産物である、キシリトールの生成量が減少することが判明した。本願発明は、上記知見に基づくものである。すなわち、本発明は以下に関する。[1]グリシン合成系タンパク質の遺伝子及び又はメチオニン合成系タンパク質の遺伝子の発現機能を喪失させ、かつキシロース代謝酵素遺伝子を導入した微生物。[2]前記グリシン合成系タンパク質の遺伝子がGLY1遺伝子である、前記[1]に記載の微生物。[3]前記メチオニン合成系タンパク質の遺伝子がMET6又はMET32遺伝子である、前記[1]又は[2]に記載の微生物。[4]酵母である、前記[1]~[3]のいずれか1つに記載の微生物。[5]サッカロミセスセレビシエである、前記[1]~[4]のいずれか1つに記載の微生物。[6]前記キシロース代謝酵素遺伝子が、キシロース還元酵素遺伝子、キシリトール脱水素酵素遺伝子及びキシルロースリン酸化酵素遺伝子からなる群より選択される少なくとも1つのものである、前記[1]~[5]のいずれか1つに記載の微生物。[7]グリシン合成系タンパク質の遺伝子及び又はメチオニン合成系タンパク質の遺伝子の発現機能を喪失させることにより、キシロース醗酵能力の増加した微生物を作製する方法。[8]前記グリシン合成系タンパク質の遺伝子がGLY1遺伝子である、前記[7]に記載の方法。[9]前記メチオニン合成系タンパク質の遺伝子がMET6又はMET32遺伝子である、前記[7]又は[8]に記載の方法。[10]前記微生物が酵母である、前記[7]~[9]のいずれか1つに記載の方法。[11]前記微生物がサッカロミセスセレビシエである、前記[7]~[10]のいずれか1つに記載の微生物。[12]前記微生物がキシロース代謝酵素遺伝子が導入されたものである、前記[7]~[11]のいずれか1つに記載の方法。[13]前記キシロース代謝酵素遺伝子が、キシロース還元酵素遺伝子、キシリトール脱水素酵素遺伝子及びキシルロースリン酸化酵素遺伝子からなる群より選択される少なくとも1つのものである、前記[12]に記載の方法。[14]前記[1]~[6]のいずれか1つに記載の微生物と、キシロース含有原料とを接触させる工程を含む、エタノールの製造方法。本発明で育種した酵母を使用することによって、キシロースからのエタノール醗酵能、あるいは醗酵速度を改善することができる。どのような醸造用酵母、実験室酵母においても、同様の育種をすることができる。また、キシロースを含むものであれば、どのようなバイオマスから得られたもろみであっても、本育種酵母で同様の効果が見込める。本発明により、優れたキシロース醗酵能を有する微生物が提供される。また、本発明の微生物の作製方法を用いることにより、広範囲な微生物を宿主として、同様に高いキシロース醗酵能を有する育種を作成することができる。本発明の微生物を用いることにより、キシロース含有原料から効率よくエタノールを製造することができる。また、本発明の微生物を用いると、例えばアミノ酸含有量の低いバイオマスを原料とした場合でも、効率よくエタノールを製造することができる。本発明者らは、グリシン合成系タンパク質の遺伝子の発現を抑制した微生物株を用いた場合、野生型同種株と比べて、キシロースの資化速度が上昇することを見出し、さらに、メチオニン合成系タンパク質の遺伝子の発現を抑制した微生物株では、キシロースを原料とするエタノール生成において副産物であるキシリトールの生産量が減少することを見出し、本発明を完成させた。以下において、本願発明の各実施態様を記載する。1グリシン合成系タンパク質遺伝子及び又はメチオニン合成系タンパク質遺伝子機能喪失微生物本発明は、ある実施態様において、グリシン合成系タンパク質遺伝子及び又はメチオニン合成系タンパク質遺伝子の発現機能を喪失させた、微生物を提供する。本発明において微生物とは、肉眼でその存在が判別できず、顕微鏡などによって観察できる程度以下の大きさの生物を意味する。微生物の例としては、細菌、藍色細菌、古細菌等の原核生物、並びに糸状菌、酵母、変形菌、担子菌、単細胞性の藻類及び原生動物等の真核生物が挙げられる。好ましくは、微生物は、糖に対する醗酵能を有する種であり、より好ましくは、酵母である。酵母は、出芽酵母又は分裂酵母のいずれであってもよい。ある実施態様では、酵母は、サッカロミセスセレビシエNBRC1951、NBRC1952、NBRC1953、NBRC1954、X21801A、CB11、W3031A、MT81BY2685、NBRC1440、NBRC1445等の出芽酵母であってもよい。別の実施態様では、酵母は、シゾサッカロミセスジャポニクスSchizosaccharomycesjaponicus、シゾサッカロミセスオクトスポルスSchizosaccharomycesoctosporus及びシゾサッカロミセスポンベSchizosaccharomycespombe等の分裂酵母であってもよい。本発明においてグリシン合成系タンパク質の遺伝子又はグリシン合成系タンパク質遺伝子とは、グリシン合成に関わる酵素タンパク質や転写調節因子をコードする遺伝子を意味し、DNA又はRNAのいずれであってもよい。例えば、酵母由来のものでは、Saccharomycesgenomedatabaseに記載のsuperpathwayofserineandglycinebiosynthesisに関与する遺伝子、SHM2、SHM1、GLY1、SER3、AGX1、SER1、SER2、SER33などが挙げられる。グリシン合成系タンパク質とは、グリシン合成に関わる酵素タンパク質及びその転写調節因子であり、例えば、酵母由来のものでは、上記superpathwayのSHM2、SHM1、GLY1、SER3、AGX1、SER1、SER2、SER33にコードされるタンパク質がある。好ましくは、Lトレオニンを加水分解してグリシンを生成する活性以下、Lトレオニンアルドラーゼ活性を有するタンパク質以下、Lトレオニンアルドラーゼであり、酵母の場合はGLY1にコードされる。本明細書中で使用される場合、グリシン合成系タンパク質遺伝子は、サッカロミセスセレビシエ由来のLトレオニンアルドラーゼGLY1配列番号2をコードする遺伝子配列番号1、SaccharomycesGenomeDatabaseAccessionNo:YEL046Cに限定されず、Lトレオニンアルドラーゼ活性を示す、Lトレオニンアルドラーゼと同じファミリーに属するホモログタンパク質をコードする遺伝子でもよい。Lトレオニンアルドラーゼと同じファミリーに属するタンパク質は多くの植物において見出されており、ファミリー内全体で高度に保存されている。Lトレオニンアルドラーゼは、グリシン合成に必須のタンパク質であるため、その遺伝子はファミリー内全体で高度に保存されており、複数の微生物のLトレオニンアルドラーゼ又はそのホモログタンパク質の遺伝子については既に塩基配列が解析され、その配列情報がデータベースに登録されている。微生物由来のLトレオニンアルドラーゼ及びそのホモログをコードする遺伝子を表1に示すが、これらに限定されるものではない。サッカロミセスセレビシエを用いて本発明の微生物を作製する場合、グリシン合成系タンパク質遺伝子は、好ましくはGLY1遺伝子である。一実施形態において、グリシン合成系タンパク質遺伝子は、Lトレオニンアルドラーゼ活性を有するポリペプチドをコードするポリヌクレオチドの塩基配列において1または複数個の塩基が欠失、挿入、置換、または付加された変異体であってもよい。変異体は、コードもしくは非コード領域、またはその両方において変異され得る。コード領域における変異は、保存的または非保存的なアミノ酸の欠失、挿入、置換および/または付加を生成し得る。本明細書中で使用される場合、配列番号2のアミノ酸配列をコードする遺伝子、または当該アミノ酸配列において1もしくは複数個例えば、1~40個、1~20個、1~15個、1~10個、1~9個、1~8個、1~7個、1~6個、1~5個、1~4個、1~3個、1~2個、1個などまたは1もしくは数個のアミノ酸が欠失、置換もしくは付加されたアミノ酸配列をコードする遺伝子もまた、グリシン合成系タンパク質の遺伝子に包含される。本発明においてメチオニン合成系タンパク質の遺伝子又はメチオニン合成系タンパク質遺伝子とは、メチオニン合成に関わる酵素タンパク質や転写調節因子をコードする遺伝子を意味し、DNA又はRNAのいずれであってもよい。例えば、酵母由来のものでは、Saccharomycesgenomedatabaseに記載のsuperpathwayofthreonineandmethioninebiosynthesisに関与する遺伝子、MET2、HOM3、FOL3、HOM2、MET7、MET17、THR1、THR4、HOM6、MET6や、superpathwayofmethioninesalvagepathwayhttppathwayyeastgenomeorgYEASTnewimagetypePATHWAYobjectPWY3O351detaillevel2に関与する遺伝子、MRI1、BAT1、ARO9、MDE1、SAM2、ARO8、SPE2、SPE3、SPE4、UTR4、MEU1、ADI1、BAT2、SAM1、および、これら遺伝子の転写調節に関わる遺伝子、MET4、MET28、MET31、MET32が挙げられる。メチオニン合成系タンパク質とは、メチオニン合成に関わる酵素タンパク質及びその転写調節因子であり、例えば、酵母由来のものでは、上記superpathwayのMET2、HOM3、FOL3、HOM2、MET7、MET17、THR1、THR4、HOM6、MET6、MRI1、BAT1、ARO9、MDE1、SAM2、ARO8、SPE2、SPE3、SPE4、UTR4、MEU1、ADI1、BAT2、SAM1、MET4、MET28、MET31、MET32にコードされるタンパク質がある。好ましくは、ホモシステインの硫黄をメチル化してメチオニンを生成する活性以下、メチオニンシンターゼ活性を有するタンパク質以下、メチオニンシンターゼ及びメチオニンシンターゼの転写制御因子である。酵母の場合、メチオニンシンターゼの遺伝子の例としてはMET6が挙げられ、その転写制御因子をコードする遺伝子としてはMET32が挙げられる。本明細書中で使用される場合、メチオニン合成系タンパク質遺伝子は、サッカロミセスセレビシエ由来のメチオニンシンターゼMET6配列番号4をコードする遺伝子配列番号3、SaccharomycesGenomeDatabaseAccessionNo:YER091C及びその転写因子であるMET32配列番号6をコードする遺伝子配列番号5、SaccharomycesGenomeDatabaseAccessionNo:YDR253Cに限定されず、メチオニンシンターゼ活性を示す、MET6と同じファミリーに属するホモログタンパク質をコードする遺伝子即ち、MET6のホモログ遺伝子でもよく、前記MET6ホモログ遺伝子の転写因子をコードする遺伝子即ち、MET32のホモログ遺伝子であってもよい。MET6及びMET32と同じファミリーに属するタンパク質は多くの植物において見出されており、ファミリー内全体で高度に保存されている。微生物由来のMET6及びそのホモログをコードする遺伝子を表2に示し、微生物由来のMET32及びそのホモログをコードする遺伝子を表3に示すが、これらに限定されるものではない。サッカロミセスセレビシエを用いて本発明の微生物を作製する場合、メチオニン合成系タンパク質遺伝子は、好ましくはMET6又はMET32遺伝子である。一実施形態において、メチオニン合成系タンパク質遺伝子は、メチオニンシンターゼ活性を有するポリペプチド又はその転写因子をコードするポリヌクレオチドの塩基配列において1または複数個の塩基が欠失、挿入、置換、または付加された変異体であってもよい。変異体は、コードもしくは非コード領域、またはその両方において変異され得る。コード領域における変異は、保存的または非保存的なアミノ酸の欠失、挿入、置換および/または付加を生成し得る。本明細書中で使用される場合、配列番号4又は6のアミノ酸配列をコードする遺伝子、または当該アミノ酸配列において1もしくは複数個例えば、1~40個、1~20個、1~15個、1~10個、1~9個、1~8個、1~7個、1~6個、1~5個、1~4個、1~3個、1~2個、1個などまたは1もしくは数個のアミノ酸が欠失、置換もしくは付加されたアミノ酸配列をコードする遺伝子もまた、メチオニン合成系タンパク質の遺伝子に包含される。本発明において、グリシン合成系タンパク質の遺伝子及び又はメチオニン合成系タンパク質の遺伝子の発現機能を喪失させたとは、グリシン合成系タンパク質遺伝子及び又はメチオニン合成系タンパク質遺伝子以下、対象タンパク質遺伝子と総称から本来の生物学的機能を有する対象タンパク質が発現されないことを意味する。このような状態の例としては、対象タンパク質遺伝子の発現産物が全く生成されない状態だけでなく、当該遺伝子の発現産物例えば、hnRNA、mRNA又はタンパク質は発現されるが、それら発現産物が本来の正常な機能を有しない状態が挙げられる。このような対象タンパク質遺伝子の機能喪失は、対象タンパク質遺伝子又はその転写調節領域若しくはプロモーター領域を含む発現制御領域上における1又は複数のヌクレオチドの欠失、置換、及び又は挿入等によって生じさせることができる。なお、前記欠失、置換、及び又は挿入を行う部位や、欠失、置換、及び又は挿入される配列は、対象タンパク質遺伝子の正常な機能が喪失しうる限り、特に限定されないが、好ましくは、対象タンパク質の活性部位をコードする遺伝子配列の少なくとも1つが欠失していることが好ましい。本発明の微生物は、特に真核生物の場合、前記対象タンパク質の発現機能が、染色体上の少なくとも一方のアレルヘテロ接合型で喪失していれば効果がある場合もあるが、好ましくは、両アレルで喪失していることホモ接合型が好ましい。2.キシロース醗酵能力の増加した醗酵微生物を作製する方法本発明は、宿主微生物のグリシン合成系タンパク質の遺伝子及び又はメチオニン合成系タンパク質の遺伝子の発現機能を喪失させることにより、キシロース醗酵能力の増加した醗酵微生物を作製する方法を提供する。グリシン合成系タンパク質遺伝子及び又はメチオニン合成系タンパク質遺伝子の発現機能を喪失させる方法としては、ジーンターゲティング又はRNAi等のノックアウト又はノックダウン技術が挙げられる1ジーンターゲティングジーンターゲティングは、相同組換えを利用して染色体上の特定遺伝子に変異を導入する手法であるCapeccchiMRScience244128812921989。まず、対象タンパク質遺伝子機能を喪失させるためのターゲティングベクターを構築する。ターゲティングベクターを構築するに当たり、対象微生物のゲノムDNAライブラリーを調製する。このゲノムDNAライブラリーは、多型等により組換え頻度が低下しないよう、ジーンターゲティングの対象となる微生物種と同系統の微生物、好ましくは、同種の微生物に由来するゲノムDNAから作製したライブラリーを用いることが好ましい。そのようなライブラリーとしては、市販のものを用いてもよい。あるいは、対象タンパク質のcDNA又はその部分配列をプローブとしてスクリーニングを行い、対象タンパク質のゲノム遺伝子のDNA配列をクローニングしてもよく、あるいは、対象タンパク質のcDNA又はその部分配列に基づいてプライマーを作成し、ゲノムの対象タンパク質遺伝子をPCR増幅することにより調製することができる。ゲノムDNAライブラリーの調製方法の詳細については、以下を参照できる。SambrookRussellMolecularCloningALaboratoryManualVol3ColdSpringHarborLaboratoryPress2001、AusubelCurrentProtocolsinMolecularBiologyJohnWileySons19871997次に、クローニングされたゲノムDNAを、シークエンシング、サザンブロッティング、制限酵素消化等によって解析してエクソン真核生物の場合の位置及び制限酵素サイトを同定する。このような解析により得られた配列情報を基に変異導入部位等を決定する。本発明において、染色体上に導入する変異欠失、置換、及び又は挿入は対象タンパク質遺伝子の正常な機能が損なわれる限り特に限定されず、これらの変異は、対象タンパク質遺伝子のイントロン領域、エクソン領域又は対象タンパク質遺伝子の発現制御領域に存在していてよい。前記変異は、対象タンパク質遺伝子のエクソン領域に存在することが好ましく、さらに好ましくは、対象タンパク質遺伝子の少なくとも1つのエクソンが欠失した変異、最も好ましくは全てのエクソンが欠失した変異である。このような変異であれば、確実に対象タンパク質遺伝子の機能を欠損させることができるからである。ターゲティングベクターは、変異導入部位の3’及び5’側の相同領域それぞれ3’アーム及び5’アームに加え、組み換え体のセレクション用の選択マーカーを含んでいてもよい。選択マーカーの例としては、NourseothricindihydrogensulfateNAT耐性遺伝子、ネオマイシン耐性遺伝子、ハイグロマイシンBホスホトランスフェラーゼ遺伝子、カナマイシン耐性遺伝子等のポジティブセレクションマーカー、LacZ、GFPGreenFluorescenceProtein及びルシフェラーゼ遺伝子などの破壊対象遺伝子の発現レポーター、単純ヘルペスウイルスチミジンキナーゼ遺伝子HSVTK、ジフテリア毒素AフラグメントDTA等のネガティブセレクションマーカー等が挙げられる。特に、本発明は、微生物を宿主とするため、栄養要求性を相補する遺伝子、例えばURA3を用いれば、ウラシルを含まない寒天培地でセレクションが可能であり、宿主の栄養要求性によっては、使用が可能である。また、シクロヘキシミドに対する薬剤耐性遺伝子YAP1を用いれば、シクロヘキシミドを含んだ培地でセレクションを行うことができる。これらのセレクションマーカーを3’アーム及び5’アームの間に挿入した配列を用いることにより、ターゲット遺伝子を破壊することもできる。ベクターは相同領域の外側に、ベクターを直鎖化するための適当な制限酵素切断部位を含んでいてもよい。このようなターゲティングベクターは、市販のプラスミドベクター例えば、pENTRDTOPOやpBluescriptII等をベースにして構築することができる。本発明の微生物は、対象タンパク質遺伝子の破壊後に、相同組換に用いた選択マーカーが、細胞から脱落していることが好ましい。例えば、上記ターゲティングベクターがコードする選択マーカー遺伝子の両端に、組換え配列を挿入し、当該組換え配列間で組換えを生じさせて、選択マーカー遺伝子をループアウトさせることにより、選択マーカーを宿主細胞から脱落させることができる。このようにして作製される本発明の微生物は、選択マーカーを有しないため、複数の対象タンパク質遺伝子を破壊する際に、選択マーカーが制限されないという優れた特徴を有する。選択マーカーの脱落に使用可能な組換え配列としては、FlippaseRecognitionTarget配列FRT配列、バクテリオファージP1由来のloxP配列、醤油酵母Zygosaccharomycesrouxii由来のRS配列、バクテリオファージMu由来のgix配列等が挙げられる。これらの組換え配列間に組換えを生じさせるためには、適切なリコンビナーゼを発現させる必要がある。上記の組換え配列間に組換えを生じさせるリコンビナーゼは、それぞれ、FlippaseFLP:FLPFRTリコンビネーション、CreCreloxPリコンビネーション、RRecombinase、GIXrecombinase等が挙げられる。さらに、リコンビナーゼをコードするプラスミドも宿主細胞から脱落していることが好ましい。宿主細胞の複数の対象タンパク質遺伝子の破壊において、選択マーカーが制限されないからである。したがって、リコンビナーゼをコードするプラスミドは、宿主細胞内で不安定なものが好ましく、特に、当該プラスミドの選択マーカーに対する選択圧をかけない状態において、宿主細胞から脱落するものが好ましい。そのようなプラスミドの例としては、YRpタイプのプラスミドが挙げられるが、これに限定されるものではない。選択マーカーは、任意の薬剤耐性NAT耐性、ネオマイシン耐性、ハイグロマイシンBホスホトランスフェラーゼ耐性、カナマイシン耐性、ハイグロマイシン耐性、ゼオシン耐性、ジェネティシン耐性、栄養要求性マーカーura3、ura5、niaD、銅耐性マーカーCUP1MarinetalProcNatlAcadSciUSA813371984、セルレニン耐性マーカーfas2mPDR4等であってもよいが、これらに限定されるものではない。図2及び3に、実施例で用いたサッカロミセスセレビシエの対象タンパク質遺伝子のノックアウトに用いた断片を得る為のベクターの例を示す。このコンストラクトは、その上流と下流にFRT配列を持つG418耐性遺伝子、FRTG418RFRT断片を含む。G418Rは、ジェネティシン耐性遺伝子であり、対象タンパク質遺伝子が破壊された株のポジティブセレクションマーカーとして用いられる。これらプラスミドを鋳型として、対象タンパク質遺伝子の各ORFの開始コドンから下流80塩基の配列にFRTG418RFRT断片のすぐ上流20塩基が並んだプライマーと、終始コドンから上流80塩基の配列にFRTG418RFRT断片のすぐ下流20塩基が並んだプライマーを用いてPCRを行う。得られたPCR増幅断片は、対象タンパク質遺伝子の各ORFの開始コドンから下流80塩基の配列、あるいは終始コドンから上流80塩基の配列がそれぞれ両端に付加された、FRTG418RFRT断片を含む。この断片を用いて、宿主細胞を形質転換し、相同組換えによりジェネティシン耐性を獲得した株を取得する。次に、取得した株にFLPをコードするプラスミド図4に示すpYRNFLPを導入してFRT配列間に組換えを生じさせ、ジェネティシン耐性遺伝子を脱落させる。さらに、pYRNFLPも不安定であるため、非選択圧下において宿主細胞から脱落している。このようにして作製された本発明の微生物は、選択マーカーを有しないため、複数の遺伝子の破壊を行う際に、先の遺伝子の破壊に使用した選択マーカーと、同一の選択マーカーを繰り返し用いることが可能である。2RNA干渉上記以外にも、対象タンパク質遺伝子の発現機能を欠損させる方法として、siRNAsmallinterferingRNA等を用いたRNA干渉RNAinterferenceRNAi法が挙げられる。RNAiは、複数の段階を経て行われるマルチステッププロセスである。最初に、RNAi発現ベクターから発現した二本鎖RNADoubleStrandedRNAdsRNA又はヘアピン状のshRNASmallHairpinRNAがDicerによって認識され、21~23ヌクレオチドのsiRNAsに分解される。次に、siRNAsはRNA誘導型サイレンシング複合体と呼ばれるRNAi標的複合体に組み込まれ、RISCとsiRNAsとの複合体がsiRNAの配列と相補的な配列を含む標的mRNAに結合し、mRNAを分解する。標的mRNAは、siRNAに相補的な領域の中央で切断され、最終的に標的mRNAが速やかに分解されてタンパク発現量が低下する。最も効力の高いsiRNA二重鎖は、19bpの二重鎖の各3’末端にウリジン残基2個の突出部分を持つ21ヌクレオチド長の配列であることが知られているElbashirSMetalGenesandDev15188200。従って、対象タンパク質遺伝子ノックダウン微生物を得るには、まず、表1~3に示されるような対象タンパク質遺伝子配列これらに限定されないの一部と相補的な配列を含むヌクレオチドを、適切なRNAi発現ベクターにdsRNA又はshRNAとして発現可能な状態で挿入してRNAiベクターを作製する。次に、前記ベクターを宿主細胞に導入し、形質転換体をセレクションすることにより対象タンパク質遺伝子ノックダウン微生物を得ることができる。dsRNA又はshRNAの設計及び合成は、市販のDNARNAシンセサイザー、例えば、AppliedBiosystems394型で行うことも可能であり、あるいは第三者機関例えば、TAKARABioに委託することもできる。対象タンパク質遺伝子の発現機能の喪失は、正常な対象タンパク質遺伝子の発現量の低下として確認することができる。対象タンパク質遺伝子の発現量は、本発明の微生物の抽出物を用いたRTPCR法及びアガロースゲル電気泳動、RealTimePCR法、ノーザンブロッティング法、マイクロアレイ解析並びに質量分析法等によって測定することができる。これらの測定方法に用いるプライマー又はプローブは、当該対象タンパク質遺伝子の配列に基づいて設計及び合成することができる。対象タンパク質遺伝子の発現産物が正常であるかどうかは、当該発現産物の配列解析を行うことにより確認することができる。本発明の微生物は、対象タンパク質遺伝子の発現機能が喪失していることを特徴とするが、さらに、キシロース代謝酵素遺伝子が発現可能な状態で導入されていてもよい。キシロース代謝酵素遺伝子は、キシロースからエタノールを生成する一連の化学反応のうち、いずれかの反応を触媒する活性を有するタンパク質以下、キシロース代謝酵素をコードする遺伝子を意味する。キシロース代謝酵素遺伝子の例としては、キシロース還元酵素遺伝子、キシリトール脱水素酵素遺伝子、キシルロースリン酸化酵素遺伝子が挙げられる。このようなキシロース代謝酵素遺伝子は、例えば、ピキアスティピティス、サッカロミセスセレビシエ、大腸菌、ラクトバシラスカゼイ、ラクトバシラスアシドフィラス、アスペルギルスフミガツス、スタフィロコッカスアウレウス、ピキアパストリス、シゾサッカロミセスポンベ等に由来するものであってもよい。本発明の微生物には、前記キシロース代謝酵素のうち、キシロース還元酵素遺伝子、キシリトール脱水素酵素遺伝子又はキシルロースリン酸化酵素遺伝子からなる群より選択される少なくとも1つが導入されていることが好ましく、これら遺伝子の2つ以上、あるいは、3つ全ての遺伝子が導入されていてもよい。キシロース還元酵素遺伝子、キシリトール脱水素酵素遺伝子又はキシルロースリン酸化酵素遺伝子の例としては、以下が挙げられるが、これに限定されるものではない。キシロース還元酵素は、キシロース代謝において、以下の反応を触媒する酵素である。XyloseNADPH→XylitolNADPキシリトール脱水素酵素は、キシロース代謝において、以下の反応を触媒する酵素である。XylitolNAD→XyluloseNADHキシルロースリン酸化酵素は、キシロース代謝において、以下の反応を触媒する酵素である。XyluloseATP→Xylulose5PADP一実施形態において、キシロース代謝酵素遺伝子キシロース還元酵素、キシリトール脱水素酵素又はキシルロースリン酸化酵素等は、キシロース代謝活性を有するタンパク質をコードするものである限り、上記キシロース代謝酵素遺伝子の変異体であってもよい。変異体の例としては、上記キシロース代謝酵素タンパク質をコードするポリヌクレオチドの塩基配列において1または複数個の塩基が欠失、挿入、置換、または付加された変異体であってもよい。変異体は、コードもしくは非コード領域、またはその両方において変異され得る。コード領域における変異は、保存的または非保存的なアミノ酸の欠失、挿入、置換および/または付加を生成し得る。本明細書中で使用される場合、配列番号8、10又は12のアミノ酸配列をコードする遺伝子配列番号7、9又は11、または当該アミノ酸配列において1もしくは複数個例えば、1~40個、1~20個、1~15個、1~10個、1~9個、1~8個、1~7個、1~6個、1~5個、1~4個、1~3個、1~2個、1個などまたは1もしくは数個のアミノ酸が欠失、置換もしくは付加されたアミノ酸配列をコードする遺伝子もまた、キシロース代謝酵素遺伝子に包含される。ポリペプチドのアミノ酸配列中のいくつかのアミノ酸が、このポリペプチドの構造または機能に有意に影響することなく容易に改変され得ることは、当該分野において周知である。さらに、人為的に改変させるだけではく、天然のタンパク質において、当該タンパク質の構造または機能を有意に変化させない変異体が存在することもまた周知である。当業者は、周知技術を使用してポリペプチドのアミノ酸配列において1または複数個のアミノ酸を容易に改変させることができる。例えば、公知の点変異導入法に従えば、ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドの任意の塩基を改変させることができる。また、ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドの任意の部位に対応するプライマーを設計して欠失変異体または付加変異体を作製することができる。さらに、本明細書中に記載される方法を用いれば、作製した改変体が所望の活性を有するか否かを容易に決定し得る。好ましい改変体は、保存性もしくは非保存性アミノ酸置換、欠失、または添加を有する。好ましくは、サイレント置換、添加、および欠失であり、特に好ましくは、保存性置換である。これらは、本発明に係るポリペプチド活性を変化させない。代表的に保存性置換と見られるのは、脂肪族アミノ酸Ala、Val、Leu、およびIleの中での1つのアミノ酸の別のアミノ酸への置換;ヒドロキシル残基SerおよびThrの交換、酸性残基AspおよびGluの交換、アミド残基AsnおよびGlnの間の置換、塩基性残基LysおよびArgの交換、ならびに芳香族残基Phe、Tyrの間の置換である。上記に詳細に示されるように、どのアミノ酸の変化が表現型的にサイレントでありそうかすなわち、機能に対して有意に有害な効果を有しそうにないかに関するさらなるガイダンスは、BowieJUらDecipheringtheMessageinProteinSequencesTolerancetoAminoAcidSubstitutionsScience247130613101990本明細書中に参考として援用されるに見出され得る。上記に挙げられる本発明に係るポリヌクレオチドを使用すれば、形質転換体または細胞においてキシロース代謝酵素活性を有するポリペプチドを合成することができる。キシロース代謝酵素遺伝子は、宿主細胞において発現可能な発現ベクターに組み込まれた状態で、導入されることが好ましい。発現ベクターは、以下のi~iiiの要素を含みうる。i宿主細胞内で転写可能なプロモーター;ii該プロモーターに結合した、キシロース代謝酵素遺伝子;及びiiiRNA分子の転写終結及びポリアデニル化に関し、宿主細胞内で機能するシグナルを構成要素として含む発現カセットを含むように構成される。このようなベクターとしては、例えば、pYE22m酵母用:BiosciBiotechBiochem59122112281995、YCp50、YIp1、SX培地キシロース50gl、67glyeastnitrogenbaseアミノ酸抜き、アデニン20mgl、ヒスチジン20mgl、ロイシン100mgl、トリプトファン20mgl等の適切な培地中で30°Cにて培養することができる。あるいは、本発明の微生物は、キシロース含有原料の存在下で培養を行う前に、本発明の微生物が増殖可能な培養条件において培養して菌体を増殖させ、その後、キシロース含有原料の存在下で、本発明の微生物を用いて醗酵を行なってもよい。但し、培養条件は、上記に限定されるものではない。当業者であれば、適宜、微生物種に応じた適切な培養条件を選択し、実際に培養を行うことができる。キシロースからのエタノール醗酵能は、本発明の微生物とキシロース含有原料とを接触させ、一定時間例えば、72時間、48時間、24時間、12時間、10時間、8時間、6時間、4時間、2時間、1時間が経過した後に系のエタノール生成量を測定することにより確認することができる。キシロース資化量及びエタノール生成量は、本発明の微生物とキシロース含有原料とを含む醗酵系の成分を、高速液体クロマトグラフィー等の公知の分析手法によって分析することにより、容易に測定することができる。キシロース含有原料は、キシロースを含む原料であれば、特に限定されないが、好ましくは、キシロースを含む生物由来の原料、即ち、キシロース含有バイオマスである。バイオマスは、日本国農林水産省が発行したバイオマスニッポン総合戦略において、再生可能な、生物由来の有機性資源で化石資源を除いたものと定義されている。よって、この定義に基づき、キシロース含有バイオマスは、再生可能な、生物由来の有機性資源で化石資源を除いたものであって、キシロースを含むものと定義することができる。キシロース含有バイオマスの具体例としては、サトウキビ、トウモロコシ、テンサイ、ジャガイモ、サツマイモ、麦、モロコシ=こうりゃん、ソルガムなどの非可食部や、廃木材、パルプ廃液、バガス、もみ殻、コーンコブ、稲ワラ、スイッチグラス、エリアンサス、ネピアグラスが挙げられるが、これらに限定されるものではない。以下、実施例を用いて本発明を詳細に説明するが、本発明は実施例に記載された態様に限定されるものではない。試験方法:本実施例で用いた試験項目および試験方法を以下に示す。特に断りのない限り、本実施例における試験方法はこれに準じた。<酵母株>本発明において用いた株は、以下の~のとおりである。いずれの株も、Pstipitisのキシロース還元酵素遺伝子とキシリトール脱水素酵素遺伝子とScerevisiaeのキシルロースリン酸化酵素遺伝子とをScerevisiaeのTDH3遺伝子のプロモーター制御下に連結させた発現ユニットを持つプラスミドpIUX1X2XK図1が、染色体上のURA3遺伝子領域に相同組換えで導入されている。株については、これに限定されるものではなく、キシロース醗酵能を持つ酵母であれば、何でも良い。MT81pIUX1X2XKMataadehis3leu2trp1pIUX1X2XKMT81pIUX1X2XKAdMataadehis3leu2trp1キシロース培地に順化した株MT81pIUX1X2XKpGK404ScTalMataadehis3leu2pIUX1X2XKpGK404ScTalNBRC1440pIUX1X2XKMatαhis3trp1pIUX1X2XKNBRC1445pIUX1X2XKMatahis3trp1pIUX1X2XKMT81は、ナショナルバイオリソースプロジェクトにNBRPNoBY2685として登録されている。<遺伝子破壊方法>以下の各々のプライマー~を用いて、プラスミドpBIITGRFRT、あるいはpUGRFRT、を鋳型としてPCRを行った。これらにより、MET6、MET32、GLY1の各ORFの開始コドンから下流80塩基の配列、あるいは終始コドンから上流80塩基の配列がそれぞれ両端に付加された、FRTG418RFRT断片を増幅される。FRTとは酵母2μプラスミド上にある、リコンビナーゼによって組換えが起こる、組換え部位であり、その配列は、5’GAAGTTCCTATTCTCTAGAAAGTATAGGAACTTC3’配列番号13である。G418Rとは、G418耐性マーカー遺伝子であり、pBIITGRFRTとpUGRFRTは両者とも、FRTG418RFRT断片を持つプラスミドである。増幅した各ORFの両末端配列を持つFRTG418RFRT断片でMT81pIUX1X2XKを形質転換し、形質転換後の菌体をジェネティシン300μgmlを含むYPDに塗布した。生育した株において、FRTG418RFRT断片が、それぞれMET6、MET32、GLY1のORFと置き換わったことを確認するために、各々、数個のコロニーからゲノミックDNAを調製した。これを鋳型として、MET6については、と、MET32についてはと、GLY1についてはと、のプライマーを用いてPCRを行った。プライマー、、は、各ORFの5’上流の配列、はG418耐性遺伝子に相補的な配列である。PCRで適切な大きさのDNAが増幅された株については、さらにプラスミドpYRNFLPを形質転換し、Nourseothricindihydrogensulfate50μgmlを含むYPDに塗布した。MET6DF15’ATGGTTCAATCTGCTGTCTTAGGGTTCCCAAGAATCGGTCCAAACAGAGAATTAAAGAAGGCCACTGAAGGTTACTGGAAACTCAAGCTATGCATCAAGC3’配列番号14MET6DR15’TTAATTCTTGTATTGTTCACGGAAGTACTTGGCGGCTTCGACCATATGAGTCAAAGACAATCTAGTTTCTTCCCAGCCTCAATACGACTCACTATAGGGC3’配列番号15MET32DF15’ATGGAGGATCAGGATGCTGCATTTATCAAACAGGCTACAGAAGCAATAGTGGATGTATCATTAAATATAGATAACATAGAGTAAAACGACGGCCAGTGCC3’配列番号16MET32DR25’TCAGCCATTACTGCTACCATTGTGGTTGTTATCTTGACGATGAACGATGTTGGATTGCTTGACTTTTTTCAGTAATTCATCCGGCTCGTATGTTGTGTGG3’配列番号17GLY1DF15’ATGACTGAATTCGAATTGCCTCCAAAATATATCACCGCTGCTAACGACTTGCGGTCAGACACATTCACCACTCCAACTGCGTAAAACGACGGCCAGTGCC3’配列番号18GLY1DR15’TCAGTATTTGTAGGTTTTTATTTCGCGGATAGCGTTGCCATCAACGTCGACCTCGGTGGATTCACTACGGTAAATCTGGGCCGGCTCGTATGTTGTGTGG3’配列番号19MET65UF15’AAACTGTGGTAGTCATAGCTC3’配列番号20MET325UF15’TATACTAGTCAAAGATAGTATCCACC3’配列番号21GLY1UF15’ATGTCACGCGAAACGGACC3’配列番号22G418MER5’AAATGCTTGATGGTCGGAAG3’配列番号23MET6NF15’ATGGTTCAATCTGCTGTCTTAGGGT3’配列番号24MET6CR5’TTAATTCTTGTATTGTTCACGGAAGTAC3’配列番号25MET32NF15’ATGGAGGATCAGGATGCTGCATTT3’配列番号26MET32CR25’TCAGCCATTACTGCTACCATTGTG3’配列番号27GLY1NF15’TGACTGAATTCGAATTGCCTC3’配列番号28GLY1CR15’ATAGCGTTGCCATCAACGTC3’配列番号29pYRNFLPは、酵母2μプラスミド上にあるFLPリコンビナーゼをTDH3p制御下で発現させるYRpタイプのプラスミドである。生育した株のゲノミックDNAを鋳型として、MET6については、と、MET32についてはと、GLY1についてはとのプライマーを用いてPCRを行った。~のプライマーは全長の各ORFを増幅できるプライマーであり、これらを用いてPCRを行うと、FRT領域で組換えが起こりG418耐性遺伝子がループアウトした株では、ORFの長さに関係なく、約350bpの短い断片が増幅される。取得した各遺伝子破壊株は、G418耐性遺伝子がなくなっている。また、YRpタイプのプラスミドは安定性が悪く、選択圧をかけない状態では、細胞からすぐに脱落してしまうので、NourseothricindihydrogensulfateNATを含まない培地で生育させることにより、pYRNFLPも脱落させることができる。従って本方法で遺伝子を破壊した株は、選択マーカー薬剤耐性を持たないため、同じ方法で、さらに複数の遺伝子を破壊することができる。<PCRのための鋳型DNA調製方法>酵母細胞を50μlのLysisbuffer0125mgmlザイモリアーゼ100T、1Mソルビトール、40mMリン酸カリウムバッファーpH68、1mMジチオスレイトールに懸濁する。30°Cで1時間インキュベートした後、プロテアーゼEを5μl加え、さらに55°Cで20分、99°Cで10分インキュベートする。15000rpmで10分遠心を行い、上清を鋳型DNAとした。<キシロースからのエタノール醗酵試験>SD培地20glグルコース、67glyeastnitrogenbaseアミノ酸抜き、アデニン20mgl、ヒスチジン20mgl、ロイシン100mgl、トリプトファン20mgl5mlで前培養した酵母を初期OD600が003になるように500mlのSD培地casaminoacid20glを含有に移し、48h、30°Cで振とう培養機で好気培養した。細胞を遠心分離機で回収し、滅菌水で洗浄した後、初期OD600が20になるように100mlのSX培地キシロース50gl、67glyeastnitrogenbaseアミノ酸抜き、アデニン20mgl、ヒスチジン20mgl、ロイシン100mgl、トリプトファン20mglに入れ、醗酵を開始した。醗酵は、生成した二酸化炭素ガスを逃すための出口がついた100mlメディウム瓶で行い、100150rpmのスターラーで培養液を撹拌した。醗酵の進行を監視するために、培地を1ml回収し、1000gで遠心分離した後、上澄みを回収し、HPLCで分析した。<メタボローム解析用サンプルの調製法>醗酵液から経時的にサンプリングした酵母細胞は遠心分離1000g、3分によって収穫した。細胞のペレットは、MilliQ水Millipore、Tokyo、Japanで2回洗浄した後、液体窒素で凍結した。細胞は凍結乾燥し、使用時まで80°Cで保存した。<醗酵もろみのHPLC分析>醗酵培地中のキシロース、キシリトール、エタノール濃度はShimPackSPRPbカラムShimadzu、Kyoto、Japanを用いたHPLC法GL7400システム、GLSciencesによって定量した。カラムは80°Cに保温し、MilliQ水を移動相として用い、流量は06mlminと設定した。各化合物はGL7454の示差屈折率検出器Shimadzuによって検出した。細胞内代謝物分析方法<GCMS分析>10mgの酵母の乾燥細胞を2mlチューブに入れる混合溶媒1000mlと内部標準溶液60mlを加えるシェーカーで1200rpm、37°C、30分混合する遠心分離機で15000xg、4°C、3分遠心分離する上澄み900mlを15mlチューブに移し、MilliQ水を400ml加え、vortexで混合する遠心分離機で15000xg、4°C、3分で遠心分離する上澄み200mlを15mlチューブに移し、遠心濃縮機及び凍結乾燥機で乾燥させるメトキシアミンピリミジンで溶解20mgmlを100ml加えるシェーカーで1200rpm、30°C、90分混合するMSTFA1mgmlを50ml加え、シェーカーで1200rpm、37°C、30分混合するバイアルに移し、1mlをGCTOFMSに注入し、分析する分析条件GCシステム6890NカラムCPSil8CBLowBleed30mx025mmIDオーブン温度80°C、15°C分で330°Cまで温度上昇後、6分保持インジェクター温度230°Cイオン源温度200°CMSシステムPegasusIIITOFMSマスレンジ85500mzスキャン速度20スキャン秒<CEMS分析>10mgの酵母の乾燥細胞を2mlチューブに入れるMeOH500ml、CHCl3500ml、MilliQ水180ml、と内部標準溶液20mlを加え、vortexで混合する遠心分離機で15000xg、4°C、3分遠心分離する上澄み350mlを15mlチューブに移し、MilliQ水を100ml加え、vortexで混合する沈殿物にMilliQ水100mlを加え、vortexで混合する両サンプルを遠心分離機で15000xg、4°C、3分遠心分離する上澄みを2本の減外ろ過チューブにチューブに移す遠心濃縮機でオーバーナイト乾燥させるMilliQ水50mlで溶解するバイアルに移し、分析する分析条件CEシステムPACEMDQキャピラリーFusedsilicacapillary50μmidx80cmシーズ液5mMHCOONH3in50MeOH電解質50mMCH3COONH3電圧300kVMSシステム4000QTRAPイオン化法ESI送液ポンプMP711実施例1:複数のキシロース醗酵性酵母による、エタノール醗酵試験17種類のキシロース醗酵性酵母MT81pIUX1X2XKMT81pIUX1X2XKAdMT81pIUX1X2XKpGK404ScTalNBRC1440pIUX1X2XKNBRC1445pIUX1X2XKを、実験方法に示した方法にてSD培地にて前培養し、細胞を集菌した後、滅菌水で洗浄した。酵母細胞をOD60020となるように100mlのSX培地に植菌して、キシロースからのエタノール醗酵試験を行った。適時醗酵もろみを1mlサンプリングし、HPLCでキシロース、キシリトール、エタノール濃度を測定した。また、同時に酵母細胞をサンプリングし、実験方法に示した方法で、GCMSおよびCEMS分析を行い、細胞内成分の網羅的分析を行った。得られた代謝物プロファイルを説明変数、諸性能評価値を応答変数としたOPLS回帰モデルを構築して、モデル構築に重要な説明変数を解析した結果、下記の化合物がキシロースからのエタノール醗酵性能と深く関与することがわかった。HomoserineHomocysteineMethionineThreonineGlycineSerineHomoserine、Threonine、GlycineはXCRキシロース資化速度gcomsumedxyloseh、EPR、EY、Rの各醗酵性能の予測モデルに重要な意味を持つ代謝物と考えられた。これらの代謝物はグリシン生合成経路の中間体であるため、上記の醗酵性能はグリシン生合成経路と関連すると予測される。予測モデルから説明変数の係数値を解析したところ、これらの代謝物の細胞内蓄積量を減少させることによって上記の醗酵性能が向上されると予想された。そこで、これらの物質の細胞内蓄積量の減少を実現するために、グリシン生合成経路にある遺伝子の1つ、GLY1を破壊するターゲット遺伝子として選択した。一方、Homocysteine、Methionine、Serineは、XPRキシリトール生成速度gxylitolh、XYキシリトール収率gxylitolgcomsumedxylose、SXPRの各醗酵性能の予測モデルに重要な意味を持つ代謝物と考えられた。これらの代謝物はメチオニン生合成経路の中間体であり、上記の醗酵性能はこの経路と関連すると予測される。予測モデルから説明変数の係数値を解析したところ、Homocysteineの細胞内蓄積量を減少することによってキシリトール関連性能XPR、XY、SXPRが減少すると予想された。そこで、メチオニン合成経路関連遺伝子を破壊、することによって、Homocysteineの蓄積量を減少させることができれば、キシリトール生産を抑えることができると予測した。破壊するターゲット遺伝子として、MET6とMET32を選択した。図9に醗酵パフォーマンスと関連が深いと考えられる代謝物とそのマップ、係数等をまとめた。実施例2:MET6、MET32、GLY1の破壊株の作製MT81pIUX1X2XK株のMET6、MET32、GLY1遺伝子を実験方法に示したように、破壊した。すなわち、各遺伝子の開始コドンから下流80bpと、終始コドンから上流80bpの配列を両端に持ち、その間にFRTG418RFRTを持つDNA断片をPCRにて調製し、MT81pIUX1X2XK株に形質転換して、ジェネティシン耐性を持つ株を選択した。複数の株よりPCRでMET6、MET32、GLY1各遺伝子に、FRTG418RFRTが挿入されたものを選択し、続いてpYRNFLPを形質転換した。Nourseothricindihydrogensulfate耐性を持つ株を選択し、pYRNFLPから発現される、リコンビナーゼの活性により、FRT配列間での組換えが起こり、G418耐性遺伝子がループアウトした株を、PCRにて選択した。実施例3:MET6、MET32、GLY1の破壊株のキシロース培地でのキシロースからのエタノール醗酵MT81pIUX1X2XK株とMET6、MET32、GLY1の破壊株を用いて、実験方法に示した方法にてSD培地にて前培養し、細胞を集菌した後、滅菌水で洗浄した。酵母細胞をOD20となるように100mlのSX培地に植菌して、エタノール醗酵試験を行った。適時醗酵もろみを1mlサンプリングし、HPLCでキシロース、キシリトール、エタノール濃度を測定した。キシロース資化経過を図5に、エタノール生成経過を図6に、キシリトール生成経過を図7に示す。また、醗酵パフォーマンスを表すいくつかの指標を図8に示した。この結果より、グリシン生合成経路の遺伝子GLY1を破壊することにより、キシロースの資化速度を早めることができた。また、メチオニン生合成経路の遺伝子、MET6あるいはMET32を破壊することにより、副産物の一つである、キシリトール生成量を減少させることができた。これらの育種を組み合わせる、あるいは他の育種と組み合わせることにより、エタノール収率も向上させることができると考えられる。<まとめ>以上記載したように、解糖系や、ペントースリン酸経路、あるいは、導入したキシロース還元酵素、キシリトール脱水素酵素のような、キシロースからのエタノールへの代謝経路にあたる酵素ではなく、直接には関係のない、グリシン生合成経路、メチオニン生合成経路に関与する遺伝子を破壊することで、キシロースからのエタノール生成パフォーマンスを向上させることができた。