"酵母を、クエン酸濃度が20mM以上である液体培地中で培養することを含む、酵母の培養方法。前記液体培地のクエン酸濃度が200mM以下である請求項1記載の酵母の培養方法。培養開始時における液体培地のクエン酸濃度が20mM以上である請求項1又は2記載の酵母の培養方法。培養開始時における液体培地のクエン酸濃度が20mM未満であり、かつ、酵母の増殖状態が誘導期又は対数増殖期に、液体培地のクエン酸濃度を20~200mMに調整することを含む、請求項1記載の酵母の培養方法。培養開始時における液体培地のクエン酸濃度が20mM未満であり、かつ、培養開始後9時間以内に、液体培地のクエン酸濃度を20~200mMに調整することを含む、請求項1記載の酵母の培養方法。前記酵母がサッカロマイセスSaccharomyces属菌又はキャンディタCandida属菌である請求項1~5のいずれか1項記載の酵母の培養方法。前記酵母が、サッカロマイセスセレビシエSaccharomycescerevisiae又はキャンディダユティリスCandidautilisである請求項1~5のいずれか1項記載の酵母の培養方法。酵母を、クエン酸濃度が20mM以上である液体培地中で培養することを含む、酵母のグルタチオン含有量を高める方法。請求項1~7のいずれか1項記載の酵母の培養方法で培養された酵母を回収することを含む、酵母の製造方法。請求項1~7のいずれか1項記載の酵母の培養方法で培養された酵母から、酵母エキスを抽出することを含む、酵母エキスの製造方法。請求項1~7のいずれか1項記載の酵母の培養方法で培養された酵母、及び前記酵母から調製された酵母エキスからなる群より選択される1以上の製造物を原料として用いることを含む、飲食品の製造方法。請求項1~7のいずれか1項記載の酵母の培養方法で培養された酵母から調製される酵母エキス。請求項1~7のいずれか1項記載の酵母の培養方法で培養された酵母、又は請求項12記載の酵母エキスを含有する調味料組成物。請求項1~7のいずれか1項記載の酵母の培養方法で培養された酵母、又は請求項12記載の酵母エキスを含有する飲食品。グルタチオン自体やグルタチオンを豊富に含む酵母エキス等を、より低コストで効率よく工業上量産するためには、グルタチオン含有量の高い酵母を利用することが重要である。特許文献1に記載の方法のように、変異処理等を行い遺伝的な改変が施された酵母の中から、よりグルタチオン含有量の高い酵母をスクリーニングする方法によっても、グルタチオン高含有酵母を得ることができるが、変異処理及びスクリーニングは手間と労力を要し、また、必ずしもグルタチオン高含有酵母を得ることができない場合も多い。また、組換え体よりも天然の酵母野生株が求められる場合があり、変異処理を行うことなく、酵母中のグルタチオン含有量を高める方法の開発が望まれている。例えば、酵母自体や酵母エキスを食用として用いる場合には、組換え体よりも野生株が好まれる場合がある。本発明は、遺伝的な改変を施すことなく、菌体中のグルタチオン含有量を高めることができる酵母の培養方法を提供することを目的とする。本発明者らは、上記課題を解決すべく鋭意研究した結果、サッカロマイセス属菌等の酵母を培養する際に、液体培地に所定量以上のクエン酸を添加することにより、当該酵母のグルタチオン含有量を高められることを見出し、本発明を完成させた。すなわち、本発明は、1酵母を、クエン酸濃度が20mM以上である液体培地中で培養することを含む、酵母の培養方法、2前記液体培地のクエン酸濃度が200mM以下である前記1記載の酵母の培養方法、3培養開始時における液体培地のクエン酸濃度が20mM以上である前記1又は2記載の酵母の培養方法、4培養開始時における液体培地のクエン酸濃度が20mM未満であり、かつ、酵母の増殖状態が誘導期又は対数増殖期に、液体培地のクエン酸濃度を20~200mMに調整することを含む、前記1記載の酵母の培養方法、5培養開始時における液体培地のクエン酸濃度が20mM未満であり、かつ、培養開始後9時間以内に、液体培地のクエン酸濃度を20~200mMに調整することを含む、前記1記載の酵母の培養方法。6前記酵母がサッカロマイセスSaccharomyces属菌又はキャンディタCandida属菌である前記1~5のいずれか1項記載の酵母の培養方法、7前記酵母が、サッカロマイセスセレビシエSaccharomycescerevisiae又はキャンディダユティリスCandidautilisである前記1~5のいずれか1項記載の酵母の培養方法、8酵母を、クエン酸濃度が20mM以上である液体培地中で培養することを含む、酵母のグルタチオン含有量を高める方法、9前記1~7のいずれか1項記載の酵母の培養方法で培養された酵母を回収することを含む、酵母の製造方法、10前記1~7のいずれか1項記載の酵母の培養方法で培養された酵母から、酵母エキスを抽出することを含む、酵母エキスの製造方法、11前記1~7のいずれか1項記載の酵母の培養方法で培養された酵母、及び前記酵母から調製された酵母エキスからなる群より選択される1以上の製造物を原料として用いることを含む、飲食品の製造方法、12前記1~7のいずれか1項記載の酵母の培養方法で培養された酵母から調製される、酵母エキス、13前記1~7のいずれか1項記載の酵母の培養方法で培養された酵母、又は前記12記載の酵母エキスを含有する、調味料組成物、14前記1~7のいずれか1項記載の酵母の培養方法で培養された酵母、又は前記12記載の酵母エキスを含有する、飲食品、を提供するものである。本発明の酵母の培養方法によれば、十分量のクエン酸を含む液体培地中で培養するという簡単な工程によって、サッカロマイセス属菌等の酵母のグルタチオン含有量を増大させることができる。また、当該培養方法によって培養された酵母は、グルタチオン含有量が十分に高いため、当該酵母を用いることにより、グルタチオン含有量が高い酵母エキスや飲食品を、簡便に得ることができる。本発明及び本願明細書においては、特に記載がない限り、グルタチオンとは、酸化型グルタチオンと還元型グルタチオンの双方を意味し、総グルタチオン含量とは、酸化型グルタチオン及び還元型グルタチオンの合計含量を意味する。本発明及び本願明細書において、酵母の乾燥菌体重量当たりのグルタチオン含有量は、微生物中のグルタチオン含有量を定量する場合に通常行われる方法により求めることができる。例えば、酵母の乾燥菌体重量当たりの総グルタチオン含量は、Titzeらの方法AnalyticalBiochemistry,Vol.27、p502、1969に従い、測定することができる。当該方法は、5,5’-ジチオビス2ニトロ安息香酸DTNBがニコチンアミドアデニンジヌクレオチドリン酸還元型NADPHによって還元される反応において、当該反応の反応速度がグルタチオン存在量に比例することを利用して、グルタチオン量を測定する方法である。本発明の酵母の培養方法は、酵母を、クエン酸濃度が20mM以上である液体培地中で培養することを特徴とする。この培養方法を用いて酵母を培養することにより、酵母のグルタチオン含有量を高めることができ、グルタチオン高含有酵母グルタチオン含有量が高い酵母を得ることが可能になる。このようなグルタチオン高含有効果酵母のグルタチオン含有量を高める効果が得られる理由は明らかではない。ただし、後記実施例3に示すように、他の酸を液体培地に添加した場合には当該効果は観察されておらず、かつ、pH制御環境下においても、クエン酸添加により当該効果が得られたことから、単に液体培地のpH調整効果ではなく、クエン酸に特有の何らかの作用により、グルタチオンの産生が促進されるか、若しくは菌体外への排出が抑制されることにより、酵母菌体内にグルタチオンが蓄積されるためと推察される。本発明の酵母の培養方法の1つの側面は、グルタチオン高含有酵母の製造方法であって、酵母を、クエン酸濃度が20mM以上である液体培地中で培養することにより、前記酵母を含む培養物を得ること、及び前記培養物から前記酵母を回収することを含む、グルタチオン高含有酵母の製造方法である。本発明のグルタチオン高含有酵母とは、親株と比較して菌体内のグルタチオン含量が優位に増加している酵母をいう。また培養物とは、酵母菌体及び酵母の培養に用いた培地を含む培養物を意味する。本発明の酵母の培養方法に供される酵母は特に限定されるものではないが、サッカロマイセス属菌又はキャンディダ属菌であることが好ましい。例えば、サッカロマイセスセレビシエSaccharomycescerevisiae、サッカロマイセスパラドキサスSaccharomycesparadoxus、サッカロマイセスミカタエSaccharomycesmikatae、サッカロマイセスバヤヌスSaccharomycesbayanus、サッカロマイセスクドリアヴゼヴィイSaccharomyceskudriavzevii、キャンディダユティリスCandidautilis、キャンディダトロピカリスCandidatropicalis、キャンディダリポリティカCandidalypolitica、及びキャンディダサケCandidasake等を用いることができる。本発明においては、特に良好なグルタチオン高含有効果が得られることから、サッカロマイセスセレビシエ又はキャンディダユティリスの培養に用いることが好ましい。本発明の酵母の培養方法は、野生株天然の酵母を培養した場合のみならず、変異処理により得られた変異株を培養した場合であっても、グルタチオン高含有効果が得られる。なお、本発明及び本願明細書において、野生株とは、自然界に元々存在していた酵母、すなわち、遺伝子に対して人工的な変異処理を施していない酵母を意味する。これに対して、変異株とは、遺伝子に対して人工的な変異処理を施して得られた酵母を意味する。なお、本発明において、変異処理とは、酵母等の生物が有する遺伝子の一部を変異させ得る処理であれば、特に限定されるものではなく、酵母等の微生物の変異株を作製する場合に通常用いられるいずれの手法を用いて行ってもよい。例えば、変異原として、紫外線、電離放射線、亜硝酸、ニトロソグアニジン、エチルメタンスルホネートEthylmethanesulufonate、以下EMSと略記する等を用いて酵母を処理することにより、酵母に変異処理を行うことができる。本発明の酵母の培養方法に用いられる液体培地のクエン酸濃度は、20mM以上であればよい。クエン酸濃度が20mM以上であることにより、グルタチオン高含有効果が奏されるために十分量のクエン酸を、酵母に作用させることができる。本発明においては、液体培地のクエン酸濃度は、20~200mMであることが好ましく、20~120mMであることがより好ましく、20~100mMであることがさらに好ましく、50~100mMであることが特に好ましい。液体培地に過剰量のクエン酸を添加した場合には、グルタチオン高含有効果が期待するほどは得られない上に、酵母の生育性を阻害する等のおそれがあるが、液体培地のクエン酸濃度を200mM以下とすることにより、酵母の生育性に対する影響を抑えつつ、十分なグルタチオン高含有効果を得ることができる。なお、液体培地のpHを制御していない条件で培養を行う際には、クエン酸以外の酸を添加した場合であっても、添加していない液体培地と比べて、グルタチオン含有量がやや高くなる。これは、酸添加による緩衝作用により、液体培地のpHが調整されたためと推察される。つまり、pHを制御していない場合には、液体培地に添加されたクエン酸のうちの一部は液体培地のpH制御に利用されることになる。このため、同程度のグルタチオン高含有効果を得るために必要な液体培地のクエン酸濃度は、pHを制御していない培養条件のほうが、pHを制御した培養条件よりも高くなる傾向がある。このため、液体培地のpHを制御しない場合には、本発明の酵母の培養方法では、液体培地のクエン酸濃度が、60~110mMで酵母を培養することが好ましく、75~90mMで酵母を培養することがより好ましい。一方で、液体培地のpHが4.0~6.0に制御されている場合には、本発明の酵母の培養方法では、液体培地のクエン酸濃度が、20~100mMで酵母を培養することが好ましく、20~75mMで酵母を培養することがより好ましい。本発明の酵母の培養方法においては、クエン酸濃度が20mM以上であるように予め調整された液体培地を用いて酵母を培養してもよく、培養開始後に、液体培地中にクエン酸を添加してもよい。すなわち、培養開始時の液体培地のクエン酸濃度が20mM以上で酵母を培養してもよく、培養開始時に、液体培地のクエン酸濃度が20mM未満クエン酸を全く含まない液体培地も含まれるで酵母を培養し、培養開始後に、液体培地のクエン酸濃度を20~200mMに調整してもよい。液体培地のクエン酸濃度を調整する方法においては、液体培地に固体のクエン酸を添加し調整してもよく、クエン酸水溶液を添加し調整してもよい。サッカロマイセス属やキャンディダ属の酵母、特にサッカロマイセス属の多くの菌株において、液体培地へのクエン酸の添加時期が早いほど、より高いグルタチオン高含有効果が得られる傾向がある。出芽が盛んな状態の酵母に対して十分な濃度のクエン酸を作用させることにより、グルタチオン高含有効果が十分に発揮される。このため、培養開始後に液体培地のクエン酸濃度を調整する場合、定常期に移行する前に、すなわち、酵母の増殖状態が誘導期又は対数増殖期に、好ましくは培養開始後から対数増殖期の中期までの間に、より好ましくは培養開始後から対数増殖期の前期までの間に、調整することが好ましい。なお、対数増殖期は、回分及び流加培養においては、吸光度等を指標として培養容器中の酵母の量を経時的に測定した場合に、対数的に増大することが観察される時期である。一方、連続培養においては、培養容器中の酵母の量がほぼ一定であることが観察される時期である。誘導期は、回分及び流加培養において、培養開始後から対数増殖期に至る前の時期である。一方、連続培養においては、メルクマールとなるパラメータを一定値に制御するまでの時期である。例えば、培養開始から9時間以内、好ましくは3時間以内に液体培地のクエン酸濃度を調整することにより、出芽が盛んな状態の酵母に対して十分な濃度のクエン酸を作用させることができる。本発明の酵母の培養方法に用いられる液体培地としては、酵母が増殖可能な液体培地に、クエン酸濃度が20mM以上となるように適宜クエン酸を添加したものが用いられる。クエン酸が添加される液体培地としては、炭素源、窒素源、及び無機塩等を含んでいるものであって、通常サッカロマイセスセレビシエ等の酵母の培養に用いられるいずれの培地も用いることができる。液体培地に含有される炭素源としては、例えば、通常の微生物の培養に利用されるグルコース、蔗糖、酢酸、エタノール、糖蜜、及び亜硫酸パルプ廃液等からなる群より選択される1又は2種以上の物質を用いることができる。また、窒素源としては、含窒素無機塩であってもよく、含窒素有機物であってもよい。例えば、尿素、アンモニア、硫酸アンモニウム、塩化アンモニウム、リン酸アンモニウム、コーンスティプリカーCSL、カゼイン、酵母エキス、及びペプトン等からなる群より選択される1又は2種以上の物質を用いることができる。また、無機塩としては、過リン酸石灰やリン安等のリン酸成分、塩化カリウムや水酸化カリウム等のカリウム成分、及び硫酸マグネシウムや塩酸マグネシウム等のマグネシウム成分等を用いることができる。その他、亜鉛、銅、マンガン、及び鉄イオン等の無機塩を使用してもよい。さらに、本発明の酵母の培養方法に用いられる液体培地には、ビタミン、及び核酸関連物質等を適宜添加しても良い。本発明の酵母の培養方法に用いられる液体培地としては、SD培地等の合成培地であってもよく、YPD培地や糖蜜培地等の半合成培地であってもよい。また、糖蜜培地のように、元々少量のクエン酸を含有している培地であってもよい。さらに、これらを改変した培地であってもよい。なお、糖蜜培地糖濃度3は、ロット等により含有量に差があるものの、一般的には、全有機酸濃度が1~3.5g/L程度であり、クエン酸濃度が50~400mg/Lである。つまり、クエン酸の分子量192から、酵母の培養に用いられる糖蜜培地は、通常、0.2~2mMのクエン酸を含有していると算出される。なお、酵母を培養する際に、炭素源としてクエン酸を用いてもよいことは、従来から知られている。しかしながら、クエン酸は培地のpHに影響を与えるため、一般的には、培地に積極的にクエン酸を添加すること例えば、10mM以上となるようにクエン酸を添加することは行われていなかった。さらに、後記参考例1において示すように、培養後の液体培地中のクエン酸量は培養前よりも増大していることから、本発明においては、液体培地に添加されたクエン酸は炭素源として用いられていないことが明らかである。さらに、液体培地にクエン酸を添加することにより、酵母中のグルタチオン含有量が増大することは、本発明者らによって初めて見出された知見である。培養形式は、液体培地を用いるものであれば、特に限定されるものではなく、培養スケール、及び得られた培養物の使用用途等を考慮して適宜決定することができる。液体培地における培養形式として、例えば、回分培養、流加培養、及び連続培養等が挙げられる。本発明の酵母の培養方法の培養条件は、所定濃度のクエン酸を含む液体培地を用いる以外は、特に限定されるものではなく、酵母を培養する場合に一般的に用いられる条件により培養することができる。例えば、培養温度は20~40°Cであることが好ましく、25~35°Cであることがより好ましい。また、培地のpHは3.5~8.0であることが好ましく、4.0~6.0であることがより好ましい。特に、工業的に培養物を量産する場合には、培地中のpHを定期的に測定し、pH4.0~6.0に維持するよう調整することが好ましい。また、通気及び攪拌を行いながら培養することが好ましい。通気の量と攪拌の条件は、培養の容量と時間、及び菌の初発濃度を考慮して、適宜決定することができる。例えば、通気は0.2~2V.V.M.Volumepervolumeperminuts程度、攪拌は50~800rpm程度で行なうことができる。本発明の酵母の培養方法により、グルタチオン含有量の高い酵母を培養することができる。例えば、本発明の酵母の培養方法を用いて培養することにより、クエン酸濃度が20mM未満である液体培地クエン酸を全く含まない液体培地を含むで培養した場合よりも、乾燥酵母菌体中に含まれるグルタチオン含有量を10以上増大させることができる。なお、乾燥菌体重量とは、菌体を乾燥させた後の重量を意味する。乾燥後の菌体重量を求める方法では、例えば、まず、酵母の培養物を遠心分離処理することにより、菌体を沈殿として回収する。回収した菌体を遠心分離操作により2回水洗した後、105°Cで5時間乾燥させた後の重量を測定することにより、乾燥菌体重量を求めることができる。即ち本発明の、酵母をクエン酸濃度が20mM以上である液体培地中で培養することを含む酵母の培養方法により、グルタチオン高含有酵母を含む培養物を得ることができ、公知の方法で前記培養物から前記酵母を回収することができる。前記培養物から酵母を回収する方法は、特に限定されるものではなく、酵母の培養物から酵母を回収する場合に通常行なわれている回収方法のいずれを用いてもよい。前記培養物から酵母を回収する方法として、例えば、酵母の培養物を遠心分離処理する方法等が挙げられる。本発明の酵母の培養方法により得られた培養物から酵母を回収することにより、グルタチオン含有量の非常に高い酵母を製造することができる。また本発明の酵母エキスは、本発明の酵母の培養方法で培養された酵母から酵母エキスを抽出することにより、調製することができる。従って、本発明の酵母の培養方法により製造された酵母からグルタチオン含有量の高い酵母エキスを調製し、製造することができる。前述のように、グルタチオンは、様々な生理活性を有する物質である。つまり、従来の培養方法に替えて本発明の酵母の培養方法を適用するだけで、従来よりも付加価値の高い酵母や酵母エキスを製造することができる。本発明の酵母の培養方法により培養された酵母からの酵母エキスの調製は、特に限定されるものではなく、酵母エキスを調製する場合に通常行われている調製方法のいずれを用いてもよい。前記調製方法として、例えば、酵母菌体内に本来あるタンパク質分解酵素等を利用して菌体を可溶化する自己消化法、微生物や植物由来の酵素製剤を添加して菌体を可溶化する酵素分解法、熱水中に一定時間浸漬することにより菌体を可溶化する熱水抽出法、種々の酸あるいはアルカリを添加して菌体を可溶化する酸アルカリ分解法、凍結及び融解を1回以上行うことにより菌体を破砕する凍結融解法、及び物理的な刺激により菌体を破砕する物理的破砕法等がある。物理的破砕法において用いられる物理的刺激としては、例えば、超音波処理、高圧下におけるホモジェナイズ、及びグラスビーズ等の固形物との混合による磨砕等がある。その他、本発明の酵母の培養方法により得られた培養物を、乾燥処理することにより、グルタチオン含有量が高い乾燥酵母菌体を得ることができる。前記培養物を乾燥処理する方法は、特に限定されるものではなく、乾燥酵母菌体を調製する場合に通常行われている調製方法のいずれを用いてもよい。前記調製方法として、例えば、凍結乾燥法、スプレードライ法、及びドラムドライ法等がある。さらに、得られた乾燥酵母菌体を粉末状に加工することにより、取り扱い性に優れたグルタチオン含有量が高い乾燥酵母菌末を得ることができる。その他、本発明の酵母の培養方法により得られた培養物から、グルタチオンを含有する分画物を得てもよい。培養物からグルタチオンを含有する分画物を分画する方法としては、通常行われている方法であればいずれの方法でもよい。例えば、熱水抽出、又は菌体破砕による抽出等により得られた抽出物を、含硫化合物と親和性の高い物質を担持したアフィニティカラムを用いて分画することにより、グルタチオンを高濃度に含む画分に濃縮精製することが可能となる。本発明の酵母の培養方法により得られたグルタチオン高含有酵母、前記酵母の乾燥酵母菌体、前記酵母から調製される酵母エキス、及び前記酵母エキス粉末は、調味料組成物としてもよい。なお、前記調味料組成物は、本発明の酵母エキス等のみからなるものであってもよく、本発明の酵母エキス等の他に、安定化剤、及び保存剤等の他の成分を含有していてもよい。前記調味料組成物は、他の調味料組成物と同様に、様々な飲食品に適宜用いることができる。さらに、本発明の酵母の培養方法により得られたグルタチオン高含有酵母、前記酵母の乾燥酵母菌体、前記酵母から調製される酵母エキス、及び前記酵母エキス粉末は、原料として直接飲食品に含有させることもできる。これにより、グルタチオンを高濃度に含む飲食品を効率的に製造することができる。これらの飲食品としては、通常乾燥酵母、酵母エキス、及びこれらを含む調味料組成物を添加しうる飲食品であれば何れでもよいが、例えばアルコール飲料、清涼飲料、発酵食品、調味料、スープ類、パン類、及び菓子類等を挙げることができる。その他、前記培養物等は、ソフトカプセル剤やハードカプセル剤、及び打錠剤等に加工することにより、サプリメント等として摂食することもできる。具体的には、飲食品の製造工程において、上記グルタチオン高含有酵母、前記酵母の乾燥酵母菌体、前記酵母から調製される酵母エキス、及び前記酵母エキス粉末等を、他の原料と同様に添加することにより、グルタチオンを高濃度に含む飲食品を製造することができる。次に実施例を示して本発明をさらに詳細に説明するが、本発明は以下の実施例に限定されるものではない。なお、以下の実施例において、乾燥菌体重量当たりの総グルタチオン含有量w/wは、GSH含有率と言い換えることがある。また、以下の実施例において用いられている酵母のうち、サッカロマイセスセレビシエYNN27株、サッカロマイセスセレビシエBY4742株、サッカロマイセスセレビシエNCYC506株、及びシゾサッカロマイセスポンベSchizosaccharomycespombeJCM1846株は野生株である。サッカロマイセスセレビシエAB9株<MATa/αgpi10/gpi10ura3/URA3leu2/LEU2>は、α1,2-マンノシルトランスフェラーゼをコードする遺伝子に変異を有し、マンナンタンパク質を培地中に放出する変異株である例えば、国際公開2006/025295号パンフレット参照。。サッカロマイセスセレビシエAB9株は、独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センター茨城県つくば市東1-1-1に寄託されている受託番号:FERMBP-10390原寄託の寄託日:2004年7月13日、国際寄託への移管日:2005年8月3日。サッカロマイセスセレビシエAB13株は、以下のようにして得られたグルタチオン高含有変異株である。まず、サッカロマイセスセレビシエの野生株に対してEMS処理を行い、得られた変異株の中から親株よりもグルタチオン含有量の高い変異株を選抜した。次いで、この選抜された変異株に対してEMS処理を行い、得られた変異株の中から親株よりもグルタチオン含有量の高い変異株を選抜した。この工程を2回以上繰り返すことにより、サッカロマイセスセレビシエAB13、KK101株、KK122株、及びKK124株を得た。また、以下の実施例において、酵母の培養に用いた半合成培地、YPD培地、SD培地、及び糖蜜培地{1、2}の組成、並びに、それに添加するTraceElement及びVitaminSolutionの組成を表1~7にそれぞれ示す。<実施例1>サッカロマイセスセレビシエKK101株に対して、半合成培地を用いて本発明の酵母の培養方法により酵母の培養を行ない、培養後の酵母のGSH含有率を測定した。まず、-80°Cでグリセロール中に保存していたKK101株を、YPD寒天培地上に塗沫して30°Cにて3日間培養した。その後、YPD寒天培地に生育した酵母1ループ分を、3mLのYPD培地を含む13mL容アシストチューブに接種し、30°Cにて、攪拌速度200rpmで1~3日間、振盪培養した。得られた培養液を、前培養液とし、以下の本培養に用いた。150μLの前培養液を、0~100mMとなるようにクエン酸を添加した半合成培地を15mL含む200mL容バッフル付三角フラスコにそれぞれ接種し、30°Cにて、攪拌速度200rpmで48時間、振盪培養した。得られた培養物中の菌体に含有される総グルタチオン量を、Titzeらの方法AnalyticalBiochemistry,Vol.27、p502、1969に従って測定し、乾燥菌体重量で除することにより、GSH含有率乾燥菌体重量当たりの総グルタチオン含有量を算出した。具体的には、まず、得られた培養物に対して、6000rpm×5分間、4°Cで遠心分離処理を行い、回収された酵母菌体を精製水で2回洗浄した。この酵母菌体に2mLの精製水を添加して懸濁した後、この懸濁液500μLをアルミ皿に入れて105°Cで5時間以上乾燥し、さらにデシケーター中で1時間以上放置した後、乾燥重量を測定し、これを乾燥菌体重量とした。一方、懸濁液500μLを湯浴中で5分間煮沸後、直ちに氷浴中で冷却し、15000rpm×5分間、4°Cで遠心分離処理を行い、回収した上清を、グルタチオン定量のためのサンプルとした。1mMのEDTAを混合した0.5Mリン酸カリウム緩衝液pH7.02.5mLに対して、5μLのグルタチオンレダクターゼと500μLのNADPHとを添加した溶液を4mL容ディスポーザルセルに入れ、測定直前に、10μLのサンプルと100μLのDTNBとを加えて転倒混和し、反応開始後から30秒間、412nmにおける吸収の増加を分光光度計で測定した。予め濃度既知のグルタチオン存在下で得られた測定値から求めた検量線を用いて、得られた測定値からグルタチオン量を算出し、これを培養物中の総グルタチオン量とした。この総グルタチオン量を、別途測定した乾燥菌体重量で除することにより、GSH含有率を算出した。図1は、液体培地中のクエン酸濃度ごとに、GSH含有率を示したグラフである。この結果、液体培地中にクエン酸を添加することによりGSH含有率が増大することが分かった。GSH含有率はクエン酸濃度依存的に増大し、本実施例の条件では、クエン酸濃度90mMで最大値をとった。<実施例2>サッカロマイセスセレビシエAB13株に対して、糖蜜培地1を用いて本発明の酵母の培養方法により酵母の培養を行ない、培養後の酵母のGSH含有率を測定した。実施例1と同様にして調製した150μLの前培養液1を、添加されたクエン酸の濃度が0~60mMとなるようにクエン酸を添加した糖蜜培地1を15mL含む200mL容バッフル付三角フラスコにそれぞれ接種し、30°Cにて、攪拌速度200rpmで48時間、振盪培養した。糖蜜培地中には元々数mMのクエン酸が含まれているため、実際の糖蜜培地中のクエン酸濃度は、添加されたクエン酸濃度よりも若干高くなる。培養後の酵母のGSH含有率を、実施例1と同様にして測定した。さらに、培養終了時点における液体培地のpHも測定した。図2A及び図2Bは、各培養物のGSH含有率図2A及び培養終了時点における液体培地のpH終pH図2Bを、糖蜜培地1に添加したクエン酸濃度ごとに示したグラフである。この結果、糖蜜培地1に対しても、クエン酸を10mM以上添加することにより、酵母のGSH含有率を、添加前よりも10以上増大させることができた。また、クエン酸を添加することにより、培養終了時点の液体培地のpHが上昇していたが、添加するクエン酸量が20mM以上の場合には、pH5.2前後で安定していた。<実施例3>サッカロマイセスセレビシエKK101株を、様々な酸を添加した半合成培地を用いて培養した場合の、培養後の酵母のGSH含有率を測定し、酵母のグルタチオン含有量に対する液体培地中の各酸の影響を調べた。実施例1と同様にして調製した150μLの前培養液を、表8記載の各種の塩を表記載の濃度となるように添加した半合成培地を15mL含む200mL容バッフル付三角フラスコにそれぞれ接種し、30°Cにて、攪拌速度200rpmで48時間、振盪培養した。培養後の酵母のGSH含有率を、実施例1と同様にして測定した。さらに、培養終了時点における液体培地のpH終pH及びOD600も測定した。測定結果を表8~10に示す。この結果、リン酸以外の酸では、液体培地に50mM以上の酸を添加することにより、液体培地のpHが4.0~6.0に調整されること、及び、この添加量範囲において、酸の添加量は液体培地のpHにあまり影響しないことが分かった。リン酸では、添加量に依存して液体培地のpHが高くなり、添加量の影響が大きいことが分かった。また、いずれの液体培地を用いた場合も、培養終了時のOD600の値は30前後であり、酵母の生育性に対する、液体培地に添加する酸の種類や量の影響は小さいことが分かった。一方で、GSH含有率は、クエン酸以外の酸においては、いずれも2.8前後であり、特に差はなかった。なお、リン酸濃度を50mMとした液体培地ではGSH含有率2.4と他よりも低かったが、これは、液体培地のpHが4未満であったためと推察される。これに対してクエン酸を含有させた液体培地では、クエン酸含有量依存的にGSH含有率が高くなる傾向が確認された。これらの結果から、クエン酸含有培地で酵母を培養することにより得られるグルタチオン高含有効果は、クエン酸に特有の効果であることが明らかである。なお、液体培地のクエン酸濃度を50mMとした場合と、他の酸を50mM以上添加した場合とで、GSH含有率と液体培地の終pHがほぼ同等であったことから、半合成培地を用いる場合には、クエン酸濃度が50mMとなるように添加されたクエン酸のうちの大部分は、液体培地のpHの調整に利用されていると推定される。<実施例4>サッカロマイセスセレビシエKK101株に対して、pHを調整した状態でさらにクエン酸を添加した液体培地を用いて本発明の酵母の培養方法により酵母の培養を行ない、培養後の酵母のGSH含有率を測定した。実施例1と同様にして調製した150μLの前培養液を、表11記載のコハク酸濃度及びクエン酸濃度となるように両酸を添加した半合成培地を15mL含む200mL容バッフル付三角フラスコにそれぞれ接種し、30°Cにて、攪拌速度200rpmで48時間、振盪培養した。培養後の酵母のGSH含有率を、実施例1と同様にして測定した。さらに、培養終了時点における液体培地のpH終pHも測定した。測定結果を表11に示す。この結果、コハク酸を添加することによって液体培地のpHを5.5~6.0に調整した状態で、液体培地にさらにクエン酸を添加することにより、無添加の場合よりもGSH含有率が飛躍的に増大した。具体的には、クエン酸濃度が0mM無添加の場合は2.8であったGSH含有率が、クエン酸濃度が50mMの場合には3.7となり、30以上増大した。一方、クエン酸濃度が75mM及び90mMの場合にはいずれも4.3となり、無添加の場合のGSH含有率よりも50以上増大した。実施例3の結果と比較すると、液体培地中のクエン酸濃度が同じ場合でも、コハク酸をともに添加した本実施例のほうが、GSH含有率が高く、この比較からも、実施例3では、液体培地に添加されたクエン酸の一部が液体培地のpHを制御することに利用されていたといえる。すなわち、これらの結果から、pHが4.0~6.0に制御された液体培地にクエン酸を添加することにより、pHが4.0~6.0に制御されていない液体培地にクエン酸を添加した場合よりも、より少ないクエン酸添加量でより高いグルタチオン高含有効果が得られることが明らかである。<実施例5>サッカロマイセスセレビシエKK122株及びKK124株に対して、ジャーファーメンターを用いてpHを調整した培養条件で、本発明の酵母の培養方法により酵母の培養を行ない、培養後の酵母のGSH含有率を測定した。まず、実施例1と同様の方法により、サッカロマイセスセレビシエKK122株及びKK124株の前々培養液を、それぞれ調製した。各前々培養液100μLを、10mLのYPD培地を含む200mL容バッフル付三角フラスコに接種し、30°Cにて、攪拌速度200rpmで1日間、振盪培養した。得られた培養液を、前培養液とし、以下の本培養に用いた。10mLの各前培養液を、半合成培地又はクエン酸濃度が90mMとなるようにクエン酸ナトリウムを添加した半合成培地90mMクエン酸含有培地を1L含む2L容ジャーファーメンターに接種し、初発pHが6.8、攪拌速度300rpm、通気量1V.V.M.、30°Cの条件で、48時間、通気攪拌培養した。培養中、pHの下限値が6.0となるように、1N水酸化ナトリウム溶液で調整した。培養開始から12時間ごとにサンプリングし、OD600を測定した。また、培養開始後24、36、及び48時間にサンプリングしたサンプルについては、実施例1と同様にしてGSH含有率も測定した。図3A及び3Bは、サッカロマイセスセレビシエKK122株図3A及びKK124株図3Bの、GSH含有率及びOD600の測定結果を示した図である。図中、棒グラフがGSH含有率の結果であり、折れ線グラフがOD600の結果である。また、90mMクエン酸が90mMクエン酸含有培地で培養した結果を、0mMクエン酸無添加が半合成培地で培養した結果を、それぞれ示す。この結果、サッカロマイセスセレビシエKK122株及びKK124株についても、サッカロマイセスセレビシエKK101株と同様に、クエン酸を含有する液体培地中で培養することにより、GSH含有率が高くなった。また、両株とも、90mMクエン酸含有培地で培養した場合には、半合成培地で培養した場合よりも、若干OD600グラフの傾きが小さかったが、培養終了時点のOD600値は、同程度であった。このことから、液体培地にクエン酸を添加することにより、若干立ち上がりに遅れが観察されるものの、最終的にはクエン酸無添加の場合と同じように酵母は培養でき、クエン酸添加による酵母の生育性への影響は小さいといえることが確認された。<実施例6>様々なサッカロマイセス属菌に対して、半合成培地を用いて本発明の酵母の培養方法により酵母の培養を行ない、培養後の酵母のGSH含有率を測定した。実施例3の結果に基づき、クエン酸濃度を50mMとした場合を基準対照とし、クエン酸濃度依存的にGSH含有率の増大が観察された場合には、本発明のグルタチオン高含有効果が奏されていることが確認できるとした。まず、実施例1と同様の方法により、表12に記載の菌株の前培養液をそれぞれ調製した。次いで、150μLの各前培養液を、50~150mMとなるようにクエン酸を添加した半合成培地を15mL含む200mL容バッフル付三角フラスコにそれぞれ接種し、30°Cにて、攪拌速度200rpmで48時間、振盪培養した。培養後の酵母のGSH含有率を、実施例1と同様にして測定した。測定結果を表12に示す。この結果、変異株であるサッカロマイセスセレビシエKK101株、KK122株、KK124株、及びAB13株のみならず、野生株であるサッカロマイセスセレビシエYNN27株、BY4742株、及びNCYC506株のいずれにおいても、クエン酸濃度が75~150mMの場合に、50mMの場合よりもGSH含有率が10以上高くなっていた。これらの結果から、本発明の酵母の培養方法は、特定の変異株のみならず、野生株に対して適用した場合でも、本発明のグルタチオン高含有効果が得られることが明らかである。<実施例7>様々なサッカロマイセス属菌に対して、YPD培地を用いて本発明の酵母の培養方法により酵母の培養を行ない、培養後の酵母のGSH含有率を測定した。クエン酸濃度依存的にGSH含有率の増大が観察された場合には、本発明のグルタチオン高含有効果が奏されていることが確認できるとした。まず、実施例1と同様の方法により、表13に記載の菌株の前培養液をそれぞれ調製した。次いで、150μLの各前培養液を、クエン酸濃度が0~90mMとなるように適宜クエン酸を添加したYPD培地を15mL含む200mL容バッフル付三角フラスコにそれぞれ接種し、30°Cにて、攪拌速度200rpmで48時間、振盪培養した。培養後の酵母のGSH含有率を、実施例1と同様にして測定した。測定結果を表13に示す。この結果、サッカロマイセスセレビシエの各菌株は、変異株と野生株のいずれも、YPD培地においても本発明のグルタチオン高含有効果が得られることが確認された。<実施例8>サッカロマイセス属以外の酵母に対しても本発明の酵母の培養方法により酵母の培養を行ない、培養後の酵母のGSH含有率を測定した。具体的には、キャンディダユティリス1561株を、クエン酸を含有させたYPD培地で培養し、GSH含有率を測定した。まず、実施例1と同様の方法により、キャンディダユティリス1561株の前培養液を調製した。次いで、15μLの各前培養液を、クエン酸濃度が0~62.5mMとなるように適宜クエン酸を添加したYPD培地を15mL含む200mL容バッフル付三角フラスコにそれぞれ接種し接種倍率が0.1、30°Cにて、攪拌速度200rpmで40時間、振盪培養した。培養後の酵母のGSH含有率を、実施例1と同様にして測定した。測定結果を表14に示す。この結果、キャンディダユティリス1561株においても、サッカロマイセス属菌と同様に本発明のグルタチオン高含有効果が得られることが確認された。<実施例9>キャンディダ属に属する他の菌株の酵母に対しても本発明の酵母の培養方法により酵母の培養を行ない、培養後の酵母のGSH含有率を測定した。具体的には、キャンディダユティリス1560株を、クエン酸を含有させた糖蜜培地2で培養し、GSH含有率を測定した。まず、実施例1と同様の方法により、キャンディダユティリス1560株の前培養液を調製した。次いで、45μLの各前培養液を、クエン酸濃度が0~62.5mMとなるように適宜クエン酸を添加した糖蜜培地2を15mL含む200mL容バッフル付三角フラスコにそれぞれ接種し接種倍率が0.3、30°Cにて、攪拌速度200rpmで24時間、振盪培養した。培養後の酵母のGSH含有率を、実施例1と同様にして測定した。測定結果を表15に示す。この結果、キャンディダユティリス1560株においても、サッカロマイセス属菌と同様に本発明のグルタチオン高含有効果が得られることが確認された。<実施例10>サッカロマイセス属菌に対して、SD培地を用いて本発明の酵母の培養方法により酵母の培養を行ない、培養後の酵母のGSH含有率を測定した。クエン酸濃度依存的にGSH含有率の増大が観察された場合には、本発明のグルタチオン高含有効果が奏されていることが確認できるとした。まず、実施例1と同様の方法により、表16に記載の菌株の前培養液をそれぞれ調製した。次いで、150μLの各前培養液を、クエン酸濃度が50~150mMとなるように適宜クエン酸を添加したYPD培地を15mL含む200mL容バッフル付三角フラスコにそれぞれ接種し、30°Cにて、攪拌速度200rpmで48時間、振盪培養した。培養後の酵母のGSH含有率を、実施例1と同様にして測定した。測定結果を表16に示す。この結果、サッカロマイセスセレビシエの各菌株は、変異株と野生株のいずれも、SD培地においても本発明のグルタチオン高含有効果が得られることが確認された。これらの結果から、本発明のグルタチオン高含有効果は、用いる液体培地の組成は特に限定されるものではなく、十分量のクエン酸を添加することにより、いずれの培地を用いても効果が得られるといえる。<実施例11>培養開始後に、液体培地のクエン酸濃度を20mM以上に調整することにより、本発明の酵母の培養方法により酵母の培養を行ない、培養後の酵母のGSH含有率を測定した。実施例3の結果に基づき、培養開始時点におけるクエン酸濃度を50mMとした場合を基準対照とし、これよりもGSH含有率が高い場合には、本発明のグルタチオン高含有効果が奏されていることが確認できるとした。実施例1と同様の方法により、サッカロマイセスセレビシエKK101株、KK122株、KK124株、及びAB13株の前培養液を、それぞれ調製した。次いで、各菌株に対して、それぞれ次のように培養を行った。まず、150μLの前培養液を、半合成培地を15mL含む200mL容バッフル付三角フラスコ5本にそれぞれ接種した。このうちの2本のフラスコには、それぞれ、クエン酸濃度が50mM又は90mMとなるように、それぞれクエン酸を添加した初期添加50mMサンプル、及び初期添加90mMサンプル。これらの5本のフラスコを、30°Cにて、攪拌速度200rpmで振盪培養した。培養開始から3時間後、クエン酸を添加していない3本のうちの1本に、クエン酸濃度が90mMとなるようにクエン酸を添加し、そのまま培養を続けた3時間後添加90mMサンプル。さらに、培養開始から6時間後に、クエン酸を添加していない残る2本のうちの1本に、クエン酸濃度が90mMとなるようにクエン酸を添加し、そのまま培養を続けた6時間後添加90mMサンプル。最後に、培養開始から9時間後に、クエン酸を添加していない残る1本に、クエン酸濃度が90mMとなるようにクエン酸を添加し9時間後添加90mMサンプル、そのまま培養を続け、培養開始から48時間後に全てのフラスコで培養を終了し、5サンプルを得た。各菌株に対して同様の培養操作を行い、合計20サンプルを得た。図4は、各サンプル中の酵母のGSH含有率を測定した結果を示した図である。なお、GSH含有率の測定は、実施例1と同様にして行った。この結果、全ての菌株において、クエン酸の添加時期に関わらず、90mMのクエン酸を添加したサンプルのGSH含有率は、初期添加50mMサンプルよりも高いことが確認された。つまり、これらの結果から、培養開始後に、液体培地のクエン酸濃度を、本発明のグルタチオン高含有効果が奏されるために十分な濃度に調整した場合であっても、酵母のグルタチオン含有量を高められることが確認された。また、菌株ごとに多少の差異はあるが、基本的にいずれの菌株においても、初期添加90mMサンプルが最もGSH含有率が高く、かつ、クエン酸の添加時期が遅くなるほど、GSH含有率が低くなる傾向が観察されたことから、培養開始後にクエン酸濃度を調整する場合には、少なくとも培養開始後9時間以内、つまり酵母の出芽が盛んな時期に行うことが好ましいと考えられた。<参考例1>液体培地に添加されたクエン酸が、炭素源として資化されているかどうかを調べた。まず、実施例1と同様の方法により、サッカロマイセスセレビシエKK101株の前培養液を調製した。150μLの前培養液を、クエン酸濃度が50mMとなるようにクエン酸ナトリウムを添加した半合成培地50mMクエン酸含有培地、クエン酸濃度が90mMとなるようにクエン酸ナトリウムを添加した半合成培地90mMクエン酸含有培地、又はリン酸濃度が100mMとなるようにリン酸カリウムを添加した半合成培地100mMりン酸含有培地を15mL含む200mL容バッフル付三角フラスコに接種し、30°Cにて、攪拌速度200rpmで48時間、振盪培養した。酵母接種後培養前に培養上清の一部を予め採取しておき、培養終了後の上清とともに、これらの上清中のクエン酸の含有量を測定した。クエン酸量の測定は、市販のキット商品名:F-キットクエン酸、Roche社製を用いたF-kit法により行った。図5は、培養前後の各上清中のクエン酸含有量の測定結果を示した図である。図中、50mMNaCitrateは50mMクエン酸含有培地で培養した結果を、90mMNaCitrateは90mMクエン酸含有培地で培養した結果を、100mMKPhospateは100mMリン酸含有培地で培養した結果を、それぞれ示す。この結果、いずれの液体培地を用いた場合でも、上清中のクエン酸含有量は、培養前よりも培養後において若干増大していた。これは、培養工程において、酵母がクエン酸を生成したためと考えられる。つまり、これらの結果から、酵母は、液体培地中のクエン酸を資化しておらず、液体培地に添加されたクエン酸が炭素源として用いられていないことが明らかである。"