"カブトガニの血球抽出物であるALと所定の生物由来の生理活性物質を含む試料の混和液を生成し、該混和液を攪拌しつつ、該混和液におけるALと前記生理活性物質との反応に起因する蛋白質の凝集またはゲル化を検出することで、前記試料中の前記生理活性物質を検出しまたは前記生理活性物質の濃度を測定する、生物由来の生理活性物質の測定方法であって、前記攪拌をする際には、前記混和液に、予め熱処理を施した所定の蛋白質を添加することで、前記混和液における前記生理活性物質に由来しない凝集またはゲル化を抑制することを特徴とする生物由来の生理活性物質の測定方法。前記予め熱処理を施した所定の蛋白質は、アルブミン、グロブリン、リゾチウムのうちの少なくとも一種であることを特徴とする請求項1に記載の生物由来の生理活性物質の測定方法。前記予め熱処理を施した所定の蛋白質はアルブミンであり、前記混和液に、予め熱処理を施した所定の蛋白質を添加する際の最終濃度は、0.015以上10以下であることを特徴とする請求項1または2に記載の生物由来の生理活性物質の測定方法。前記熱処理は、加熱処理であり、その処理温度が95°C以上であることを特徴とする請求項1から3のいずれか一項に記載の生物由来の生理活性物質の測定方法。前記熱処理は、加熱処理であり、その処理時間が10分以上であることを特徴とする請求項1から4のいずれか一項に記載の生物由来の生理活性物質の測定方法。前記熱処理は、オートクレーブ滅菌処理であり、該オートクレーブ滅菌処理の処理温度が120°C以上で、オートクレーブ滅菌処理の時間が10分以上であることを特徴とする請求項1から3のいずれか一項に記載の生物由来の生理活性物質の測定方法。前記生物由来の生理活性物質は、エンドトキシンまたはβ-D-グルカンであることを特徴とする請求項1から6のいずれか一項に記載の生物由来の生理活性物質の測定方法。カブトガニの血球抽出物であるALを含み、所定の生物由来の生理活性物質を含む試料との混和液を生成し、該混和液を攪拌しつつ、前記生理活性物質に起因する蛋白質の凝集またはゲル化を検出することで、前記試料中の前記生理活性物質を検出しまたは前記生理活性物質の濃度を測定するための、生物由来の生理活性物質の測定用試薬であって、予め熱処理を施した所定の蛋白質が添加され、前記混和液における前記生理活性物質に由来しない凝集またはゲル化を抑制可能としたこと特徴とする生物由来の生理活性物質の測定用試薬。前記予め熱処理を施した所定の蛋白質は、アルブミン、グロブリン、リゾチウムのうちの少なくとも一種であることを特徴とする請求項8に記載の生物由来の生理活性物質の測定用試薬。前記熱処理は、加熱処理であり、その処理温度が95°C以上であることを特徴とする請求項8または9に記載の生物由来の生理活性物質の測定用試薬。前記熱処理は、加熱処理であり、その処理時間が10分以上であることを特徴とする請求項8から10のいずれか一項に記載の生物由来の生理活性物質の測定用試薬。前記熱処理は、オートクレーブ滅菌処理であり、該オートクレーブ滅菌処理の処理温度が120°C以上で、オートクレーブ滅菌処理の時間が10分以上であることを特徴とする請求項8または9に記載の生物由来の生理活性物質の測定用試薬。所定の生物由来の生理活性物質を含む試料とカブトガニの血球抽出物であるALとの混和液を光の入射が可能な状態に保持するとともに該混和液における反応を進行させる混和液保持手段と、前記混和液保持手段中の前記混和液を攪拌する攪拌手段と、前記混和液保持手段中の混和液に光を入射する光入射手段と、前記入射光の前記混和液における透過光または散乱光を受光し電気信号に変換する受光手段と、前記受光手段において変換された電気信号から前記試料中における前記生理活性物質とALとの反応開始時刻を判定する判定手段と、予め定められた、前記反応開始時刻と前記生理活性物質の濃度との関係より、前記試料中の前記生理活性物質の存在または濃度を導出する導出手段と、を備える生物由来の生理活性物質の測定装置であって、前記攪拌手段によって、前記混和液を攪拌する際に、予め熱処理を施した所定の蛋白質を前記混和液に添加する蛋白質添加手段をさらに備えることを特徴とする生物由来の生理活性物質の測定装置。前記蛋白質添加手段によって添加される蛋白質は、アルブミン、グロブリン,リゾチウムのうちの少なくとも一種であることを特徴とする請求項13に記載の生物由来の生理活性物質の測定装置。前記蛋白質添加手段によって添加される蛋白質は、アルブミンであり、前記蛋白質添加手段によって、前記混和液に予め熱処理を施した所定の蛋白質を添加する際の最終濃度は、0.015以上10以下であることを特徴とする請求項13または14に記載の生物由来の生理活性物質の測定装置。前記熱処理は、加熱処理であり、その処理温度が95°C以上であることを特徴とする請求項13から15のいずれか一項に記載の生物由来の生理活性物質の測定装置。前記熱処理は、加熱処理であり、その処理時間が10分以上であることを特徴とする請求項13から16のいずれか一項に記載の生物由来の生理活性物質の測定装置。前記熱処理は、オートクレーブ滅菌処理であり、該オートクレーブ滅菌処理の処理温度が120°C以上で、オートクレーブ滅菌処理の時間が10分以上であることを特徴とする請求項13から15のいずれか一項に記載の生物由来の生理活性物質の測定装置。前記生物由来の生理活性物質は、エンドトキシンまたはβ-D-グルカンであることを特徴とする請求項13から18のいずれか一項に記載の生物由来の生理活性物質の測定装置。本発明の目的とするところは、カブトガニの血球抽出物であるALと生物由来の生理活性物質との反応に起因する凝集あるいはゲル化を光学的に測定する、生物由来の生理活性物質の測定法において、より高い測定精度を得るための技術を提供することである。より詳しくは、攪拌比濁法、光散乱法、あるいはAL結合ビーズ法によって試料中の生物由来の生理活性物質の濃度を測定する場合に、AL試薬と試料の混和液の攪拌に起因して生じる、前記生理活性物質に由来しない凝集またはゲル化を抑制することによって、上記測定の測定精度を向上させることを目的とする。本発明は、AL試薬と生物由来の生理活性物質を含む試料とを混和させ、混和液を攪拌しつつ、混和液におけるALと生物由来の生理活性物質との反応に起因する蛋白質の凝集またはゲル化を検出する際に、予め熱処理を施した所定の蛋白質を混和液に添加することで、該混和液におけるALと生物由来の生理活性物質との反応に起因しない、蛋白質の凝集またはゲル化を抑制することを最大の特徴とする。より詳しくは、カブトガニの血球抽出物であるALと所定の生物由来の生理活性物質を含む試料の混和液を生成し、該混和液を攪拌しつつ、該混和液におけるALと前記生理活性物質との反応に起因する蛋白質の凝集またはゲル化を検出することで、前記試料中の前記生理活性物質を検出しまたは前記生理活性物質の濃度を測定する、生物由来の生理活性物質の測定方法であって、前記攪拌をする際には、前記混和液に、予め熱処理を施した所定の蛋白質を添加することで、前記混和液における前記生理活性物質に由来しない凝集またはゲル化を抑制することを特徴とする。ここで、混和液の攪拌によって試料とAL試薬との反応曲線が変化する現象の原因が以下のものであることが明確になってきた。すなわち、生物由来の生理活性物質の含有量が非常に少ない試料を測定する場合は、攪拌によって、1AL試薬およびまたは試料中に含まれる蛋白質同士が凝集し、あるいは、2攪拌に伴うずり応力物理的刺激によってプロクロッティングエンザイムが切断活性化され、クロッティングエンザイムに変化し、生物由来の生理活性物質に由来しない凝集物が生成されることが見出された。この生物由来の生理活性物質に由来しない凝集は、攪拌比濁法及び光散乱法の両方の方法においてゲル粒子の発生と同様の信号として検出されてしまうため、反応曲線タイムコースの形状に影響を及ぼし、測定精度が低下し、誤計測をもたらす危険性があった。これに対し、発明者らの鋭意研究により、試料とAL試薬の混和時に、予め熱処理した所定の蛋白質を添加することで上記の生物由来の生理活性物質に由来しない凝集またはゲル化の誘発を抑制できることが見出された。さらに、この熱処理した所定の蛋白質を試料に添加しても、生物由来の生理活性物質に由来する凝集またはゲル化の測定に影響がないことが実験によって確認された。本発明によれば、特に生物由来の生理活性物質の含有量の少ない試料とAL試薬との混和液における凝集またはゲル化を攪拌しつつ測定する場合に、攪拌による、生物由来の生理活性物質に起因しない凝集またはゲル化を抑制することができる。その結果、生物由来の生理活性物質の測定における精度を向上させることができる。また、本発明においては、前記予め熱処理を施した所定の蛋白質は、アルブミン、グロブリン、リゾチウムのうちの少なくとも一種としてもよい。これらの蛋白質は、試料とAL試薬の混和時に添加されることにより、生物由来の生理活性物質に由来しない凝集またはゲル化の誘発を抑制できることが確認されているため、より確実に、攪拌による、生物由来の生理活性物質に起因しない凝集またはゲル化を抑制することができる。なお、本発明に用いることのできる蛋白質として、例えば、ヒト血漿中に存在する蛋白質、動植物、あるいは昆虫の蛋白質など多数種類を用いることができると考えられる。説明の都合上、本文書ではアルブミンを中心に記述することにする。また、本発明においては、前記予め熱処理を施した所定の蛋白質がアルブミンの場合は、前記混和液に添加する際の最終濃度は、0.015以上10以下としてもよい。これによって、より効果的に、攪拌による生物由来の生理活性物質に起因しない凝集またはゲル化を抑制することができる。なお、上記最終濃度は、望ましくは、0.03以上5以下がよい。さらに望ましくは、0.05以上0.5以下がよい。また、本発明においては、所定の蛋白質に予め施す熱処理の温度は70°C以上が望ましい。また、上記熱処理の時間は10分以上が望ましい。また、所定の蛋白質に予め施す熱処理としては、オートクレーブ滅菌処理を行ってもよいし、アルミブロックヒーターなどの機器を用いた加熱処理を行ってもよい。これらの熱処理によって、熱処理を施さない蛋白質を添加した場合よりも、攪拌による生物由来の生理活性物質に起因しない凝集またはゲル化をより確実に抑制することができる。なお、上記オートクレーブ滅菌処理の温度は一般に120°C以上である。この温度範囲とすることで、より確実に、攪拌による生物由来の生理活性物質に起因しない凝集またはゲル化を抑制することができる。より詳しくは、オートクレーブ滅菌処理の温度は120°C以上300°C以下が望ましく、120°C以上260°C以下がより望ましい。また、上記オートクレーブ滅菌処理で熱処理を行った場合、熱処理の時間は10分以上とするとよい。この時間範囲とすることで、より確実に、攪拌による生物由来の生理活性物質に起因しない凝集またはゲル化を抑制することができる。より詳しくは、10分以上120分以下とすることが望ましい。この時間範囲とすることで、より確実に、攪拌による生物由来の生理活性物質に起因しない凝集またはゲル化を抑制することができるとともに、蛋白質を汚染している生物由来の生理活性物質をより確実に不活化することができる。また、アルミブロックヒーターを用いて、120°Cよりも低温の95°Cでの加熱を施した場合でも、10分以上加熱することで、攪拌による生物由来の生理活性物質に起因しない凝集またはゲル化を抑制する効果が確認されている。従って、アルミブロックヒーターを用いて加熱処理を行った場合、熱処理の温度は、95°C以上とするとよい。より詳しくは95°C以上260°C以下としてもよい。また、加熱処理における加熱時間は10分以上とするとよい。より詳しくは10分以上120分以下としてもよい。以上のような熱処理条件を採用することで、より確実に、攪拌による生物由来の生理活性物質に起因しない凝集またはゲル化を抑制することができる。しかしながら本発明においては、より効果的に、攪拌による生物由来の生理活性物質に起因しない凝集またはゲル化を抑制することができる蛋白質濃度や加熱温度、加熱時間であれば上記の条件にはこだわらない。例えば、90°C3時間等という条件で、より低い温度であっても長い時間オートクレーブ滅菌処理を行うことで、攪拌による生物由来の生理活性物質に起因しない凝集またはゲル化を抑制するとともに、蛋白質を汚染している生物由来の生理活性物質を充分に失活させることが可能である。また、本発明においては、前記生物由来の生理活性物質は、エンドトキシンまたはβ-D-グルカンであってもよい。そうすれば、最も代表的な発熱性物質であるエンドトキシンの検出または濃度測定がより正確に行なえ、エンドトキシンに汚染された輸液、注射薬剤、血液などが人体に入り、副作用が惹起されることを抑制できる。同様に、β-D-グルカンの検出または濃度測定がより正確に行なえ、カンジダやスペルギルス、クリプトコッカスのような一般の臨床でよく見られる真菌のみならず、稀な真菌も含む広範囲で真菌感染症のスクリーニングをより正確に行なうことが可能となる。また、本発明は、カブトガニの血球抽出物であるALを含み、所定の生物由来の生理活性物質を含む試料との混和液を生成し、該混和液を攪拌しつつ、前記生理活性物質に起因する蛋白質の凝集またはゲル化を検出することで、前記試料中の前記生理活性物質を検出しまたは前記生理活性物質の濃度を測定するための、生物由来の生理活性物質の測定用試薬であって、予め熱処理を施した所定の蛋白質が添加され、前記混和液における前記生理活性物質に由来しない凝集またはゲル化を抑制可能としたこと特徴とする生物由来の生理活性物質の測定用試薬であってもよい。また、その場合は、前記予め熱処理を施した所定の蛋白質は、アルブミン、グロブリン、リゾチウムのうちの少なくとも一種としてもよい。また、本発明は、所定の生物由来の生理活性物質を含む試料とカブトガニの血球抽出物であるALとの混和液を光の入射が可能な状態に保持するとともに該混和液における反応を進行させる混和液保持手段と、前記混和液保持手段中の前記混和液を攪拌する攪拌手段と、前記混和液保持手段中の混和液に光を入射する光入射手段と、前記入射光の前記混和液における透過光または散乱光を受光し電気信号に変換する受光手段と、前記受光手段において変換された電気信号から前記試料中における前記生理活性物質とALとの反応開始時刻を判定する判定手段と、予め定められた、前記反応開始時刻と前記生理活性物質の濃度との関係より、前記試料中の前記生理活性物質の存在または濃度を導出する導出手段と、を備える生物由来の生理活性物質の測定装置であって、前記攪拌手段によって、前記混和液を攪拌する際に、予め熱処理を施した所定の蛋白質を前記混和液に添加する蛋白質添加手段をさらに備えることを特徴とする生物由来の生理活性物質の測定装置であってもよい。この装置によれば、試料とAL試薬との混和液を攪拌する際に、自動的に、予め熱処理を施した所定の蛋白質を前記混和液に添加することができ、より簡単に、該混和液における前記生理活性物質に由来しない、蛋白質の凝集またはゲル化を抑制することができる。この装置においても、蛋白質添加手段によって添加される蛋白質は、アルブミン、グロブリン、リゾチウムのうちの少なくとも一種としてもよい。また、添加される蛋白質がアルブミンの場合は、混和液に添加する際の最終濃度は、0.015以上10以下とするとよい。また、添加される蛋白質に予め施す熱処理として、例えばオートクレーブ滅菌処理を行ってもよい。その場合、オートクレーブ滅菌処理の温度は120°C以上で、オートクレーブ滅菌処理の時間は10分以上としてもよい。また、添加される蛋白質に予め施す熱処理として、例えばアルミブロックヒーターなどの機器を用いた加熱処理を行ってもよい。その場合、熱処理の温度は、95°C以上とするとよい。また、加熱処理における加熱時間は10分以上とするとよい。さらに、生物由来の生理活性物質は、エンドトキシンまたはβ-D-グルカンとしてもよい。なお、上記した本発明の課題を解決する手段については、可能なかぎり組み合わせて用いることができる。本発明にあっては、攪拌比濁法、光散乱法、あるいはAL結合ビーズ法によって試料中の生物由来の生理活性物質の濃度を測定する場合に、混和液の攪拌に起因して生じる、前記生理活性物質に由来しない凝集またはゲル化を抑制することによって、上記測定の測定精度を向上させることができる。<実施例1>ALとエンドトキシンとが反応してゲルが生成される過程以下、リムルス反応ともいう。はよく調べられている。すなわち、図9に示すように、エンドトキシンがAL中のセリンプロテアーゼであるC因子に結合すると、C因子は活性化して活性型C因子となり、活性型C因子はAL中の別のセリンプロテアーゼであるB因子を加水分解して活性化させ活性化B因子とする。この活性化B因子は直ちにAL中の凝固酵素の前駆体を加水分解して凝固酵素とし、さらに、この凝固酵素がAL中のコアギュロゲンを加水分解してコアギュリンを生成する。そして、生成したコアギュリンが互いに会合して不溶性のゲルをさらに生成し、AL全体がこれに巻き込まれてゲル化すると考えられている。また、同様にβ-D-グルカンがAL中のG因子に結合すると、G因子は活性化して活性型G因子となる、活性型G因子はAL中の凝固酵素の前駆体を加水分解して凝固酵素とする。その結果、エンドトキシンとALとの反応と同様、コアギュリンが生成され、生成したコアギュリンが互いに会合して不溶性のゲルをさらに生成する。この一連の反応は哺乳動物に見られるクリスマス因子やトロンビンなどのセリンプロテアーゼを介したフィブリンゲルの生成過程に類似している。このような酵素カスケード反応はごく少量の活性化因子であっても、その後のカスケードを連鎖して活性化していくために非常に強い増幅作用を有する。従って、ALを用いた所定生理活性物質の測定法によれば、サブピコグラム/mLオーダーのきわめて微量の所定生理活性物質を検出することが可能になっている。エンドトキシンならびにβ―D-グルカンを定量するための試薬としては、カブトガニの血球抽出物ALAmoebocytelysateを原料としたリムルス試薬、ならびに、リムルス試薬に凝固酵素により加水分解され着色強度、蛍光強度、または化学発光強度のいずれかが増加する合成基質を添加した試薬が使用される。また、リムルス試薬中のC因子の組換え体リコンビナントC因子とその合成基質着色、蛍光、化学発光かの手段は問わないの混合試薬などが使用される場合もある。さらに、リムルス試薬中のG因子の組換え体リコンビナントG因子とその合成基質着色、蛍光、化学発光かの手段は問わないの混合試薬などを使用することも可能である。エンドトキシンやβ-D-グルカンなどの所定生理活性物質とALとの反応に起因して変化する物理量は、試薬の種類に応じて選択すればよい。試料の光透過率または、濁度、散乱光強度、光散乱粒子数、吸光度、蛍光強度、化学発光強度などの光学的な物理量の変化を検出するか、試料のゲル化に伴う試料の粘性、電気伝導度などの物理量の変化を検出すればよい。これらの物理量の検出には、濁度計、吸光光度計、光散乱光度計、レーザー光散乱粒子計測計、蛍光光度計、フォトンカウンターなどの光学機器、ならびに、これらを応用した専用の測定装置を使用することができる。また、粘度計、電気伝導率計やこれらを応用した専用の測定装置を使用しても構わない。所定生理活性物質を定量する測定法としては前述のように攪拌比濁法ならびに光散乱法が挙げられる。図9に示すように、これらの測定法はALの酵素カスケード反応によって生成されるコアギュリンの会合物を前者は試料の濁りとして、後者は系内に生成されるゲルの微粒子の数として検出することで、高感度な測定を可能にしている。次に、本実施例において散乱光を取得するために使用した光散乱粒子計測装置について説明する。なお、以下の説明においては、所定生理活性物質としてエンドトキシンを例にとって説明するが、以下の説明はβ-D-グルカンなど他の生理活性物質にも適用可能である。図1には、本実施例におけるエンドトキシンの測定装置としての光散乱粒子計測装置1の概略構成を示す。光散乱粒子計測装置1に使用される光源2にはレーザー光源が用いられているが、他に、超高輝度LEDなどを用いてもよい。光源2から照射された光は、入射光学系3で絞られ、試料セル4に入射する。この試料セル4にはエンドトキシンの測定をすべき試料とAL試薬の混和液が保持されている。試料セル4に入射した光は、混和液中の粒子コアギュロゲンモノマー、ならびに、コアギュロゲンオリゴマーなどの測定対象で散乱される。試料セル4の、入射光軸の側方には出射光学系5が配置されている。また、出射光学系5の光軸の延長上には、試料セル4内の混和液中の粒子で散乱され出射光学系5で絞られた散乱光を受光し電気信号に変換する受光素子6が配置されている。受光素子6には、受光素子6で光電変換された電気信号を増幅する増幅回路7、増幅回路7によって増幅された電気信号からノイズを除去するためのフィルタ8、ノイズが除去された後の電気信号のピーク数からゲル粒子数を演算し、さらにゲル化検出時間を判定してエンドトキシンの濃度を導出する演算装置9及び、結果を表示する表示器10が電気的に接続されている。また、試料セル4には、外部から電磁力を及ぼすことで回転し、試料としての混和液を攪拌する攪拌子11が備えられており、試料セル4の外部には、攪拌器12が備えられている。これらにより、攪拌の有無及び攪拌速度の調整が可能となっている。ここで、試料セル4は本実施例の混和液保持手段に相当する。光源2及び入射光学系3は光入射手段に相当する。攪拌子11及び攪拌器12は攪拌手段に相当する。出射光学系5及び受光素子6は受光手段に相当する。演算装置9は判定手段及び導出手段に相当する。上記の光散乱粒子計測装置1においては、リムルス反応の最終段階であるコアギュリンゲル粒子の出現時間ゲル化検出時間=ゲル化時間を測定し、エンドトキシン濃度とゲル化検出時間の間に成立する検量関係を用いて検体中のエンドトキシン濃度を算出する。例えば、0.01、0.001及び0.0001EU/mL1EU/mL≒100~200pg/mLのエンドトキシン溶液を測定したときのゲル化検出時間はAL試薬の種類やロットによるが20~30、40~60及び80~150分程度となり、両対数グラフ上で直線の検量線が得られる。しかしながら、実際には図2に示すように、0.0001EU/mLよりもさらに低濃度に調製したエンドトキシン溶液または注射用水を測定した場合にも、80~150分程度でゲル化が検出され、低濃度の領域において測定結果が検量線から外れる傾向があった。従って、上記の検量線を用いてそのまま判定を行うと、エンドトキシン濃度の測定値は本来の濃度よりも高めとなり、偽陽性判定が生じるおそれがあった。なお、図2の測定に用いたAL試薬はES-IIシングルテストワコー和光純薬製である。これは、1攪拌子11及び攪拌器12による攪拌の刺激によって蛋白質が変性し不溶性の凝集体が生成する、2攪拌の刺激によって凝固酵素が活性化しコアギュリンゲルが生成する、といったエンドトキシンに由来しない凝集物ゲル粒子の生成に起因することが発明者らの検討によって明らかになってきた。従って、0.0001EU/mL以下の低濃度のエンドトキシンを正確に測定し、偽陽性判定を防止するには、上記のエンドトキシンに由来しない凝集を抑制する必要がある。これに対し、発明者らの鋭意研究により、ヒト血清アルブミンHSAの添加によってエンドトキシンに由来しない凝集を抑制できることが分かった。本実施例においては、エンドトキシンフリーのヒト血清アルブミンHSA溶液オートクレーブ滅菌済みであるエンドトキシン検出用抽出液Wako293-51601:和光純薬製を使用し、これによるエンドトキシンに由来しない凝集の抑制効果を調べた。また、本測定においてもAL試薬としてはES-IIシングルテストワコー和光純薬製を用いた。なお、上記においてオートクレーブ滅菌処理は、予め行われる熱処理に相当する。上記測定の結果を図3に示す。図3の横軸は混和液中のHSA濃度であり、縦軸はゲル化検出時間である。図3から分かるように、HSAが含まれる場合は、HSAが含まれない場合と比較してゲル化検出時間が遅くなる傾向があった。そして、特にHSAの濃度が0.125~0.25であるときに、ゲル化検出時間が顕著に遅くなった。これにより、HSAを適量、例えばHSA濃度が0.015以上10以下となるように添加すれば、エンドトキシンに由来しない凝集を抑制できることが示唆された。上記のように、HSAを混和液に添加することによりエンドトキシンに由来しない凝集が抑制されることが認められたことを受け、HSAが添加された状態でエンドトキシン溶液のゲル化検出時間を測定し、検量線を作成した。HSAを添加した場合と、HSA未添加の場合の検量線を図4に示す。図4aはHSAを添加した場合の検量線、図4bHSAを未添加の場合の検量線を示す。なお、本測定においてもAL試薬としてはES-IIシングルテストワコー和光純薬製を用いた。また、図4aにおける測定では、AL試薬に、各濃度のエンドトキシン溶液200μLとともに、エンドトキシン検出用抽出液Wako293-51601:和光純薬製を10μL添加し、混和液中のHSA濃度を0.24とした。図4より判るように、まず、HSAを添加した場合にはエンドトキシン濃度が0.01~0.0001EU/mLの範囲で、HSA添加時のゲル化検出時間が未添加時より遅くなることはなかった。これは、HSAがリムルス反応を阻害することはないことを示している。また、HSAを添加した場合は、1~0.00001EU/mLの範囲で相関係数0.992という、良好な直線性を有する検量線を得ることができた。これは、HSA添加によりエンドトキシンに由来しない凝集が抑制された効果と考えられる。なお、上記においてはヒト血清アルブミンHSA溶液オートクレーブ滅菌済みをエンドトキシン検出用抽出液として使用し、これによるエンドトキシンに由来しない凝集の抑制効果を調べたが、治療用のヒト血清アルブミン製剤アルブミナー、CSLベーリング社を加熱することによっても同様の効果が確認された。また、グロブリンあるいはリゾチウムは、アルブミンと類似した特性を有する蛋白質であるので、これらを使用した場合にも、上記と同様の効果があると考えられる。次に、上記のエンドトキシンに由来しない凝集が、攪拌子11及び攪拌器12による混和液の攪拌によって引き起こされていると考えられることから、混和液に対する攪拌の回転数を低減することを検討した。通常1000rpmの攪拌回転数を600~1200rpmの間で変化させつつ注射用水のゲル化検出時間の測定を行った。測定結果を図5に示す。図5において横軸は攪拌子11の攪拌回転数である。また、縦軸はゲル化検出時間である。図から判るように、攪拌子11の攪拌回転数を変えてもゲル化検出時間が有意に遅くなることはなかった。これにより、エンドトキシンに由来しない凝集を抑制する策として、攪拌回転数の低減は効果が期待できないことが判った。上記の実施例においては、本発明を、光散乱粒子計測装置1を用いた光散乱法によってエンドトキシン濃度を測定する場合に適用した例について説明したが、本発明が適用されるのは、光散乱法による場合だけでないことはもちろんである。例えば、攪拌比濁法によってエンドトキシン濃度を測定する場合に適用してもよい。以下に、攪拌比濁法に用いられる比濁計測装置について説明する。図6には、本実施例のエンドトキシンの測定装置の別の例としての比濁計測装置21の概略構成を示す。この比濁計測装置21では、攪拌比濁法によってエンドトキシンの測定を行う。比濁計測装置21においても、調製した希釈系列のエンドトキシンを含んだ試料を混和液保持手段としての測定用ガラス容器以下、キュベット22に移注する。キュベット22の周囲を囲うように保温器25が設けられている。この保温器25の内部には図示しない電熱線が備えられており、この電熱線に通電されることにより、キュベット22を約37°Cに保温するようになっている。このキュベット22の中にはステンレス製の攪拌子23が備えられている。この攪拌子23は、キュベット22の下部に設置された攪拌器24の作用によってキュベット22の中で回転する。すなわち、攪拌器24はモータ24aとモータ24aの出力軸に設けられた永久磁石24bとからなっている。そして、モータ24aに通電されることで永久磁石24bが回転する。この永久磁石24bからの磁界が回転するために、ステンレス製の攪拌子23が回転磁界の作用で回転する。この攪拌子23と攪拌器24とは攪拌手段に相当する。なお、比濁計測装置21には光入射手段としての光源26と受光手段としての受光素子29が設置されている。光源26から出射した光はアパーチャ27を通過した後、保温器25に設けられた入射孔25aを通過してキュベット22中の試料に入射される。キュベット22中の試料を透過した光は保温器25に設けられた出射孔25bから出射され、アパーチャ28を通過して受光素子29に照射される。受光素子29では、受光した光の強度に応じた光電信号を出力する。この光電信号の出力は、判定手段及び導出手段としての演算装置30に入力される。演算装置30においては、予め格納されたプログラムアルゴリズムに従い、反応開始時刻の判定及び、エンドトキシン濃度の導出が行われる。なお、この他に導出されたエンドトキシン濃度を表示する表示装置を含めて比濁計測装置21としてもよい。なお、表1には、試料とAL試薬の混和液に、非加熱のHSAを添加した場合と、オートクレーブ滅菌処理120°C、15~120分にて予め熱処理を施したHSAを添加した場合のゲル化検出時間を示す。なお、混和液中のHSA濃度は、いずれの場合も0.25である。表1より判るように、予め熱処理を施したHSAを添加した方が、非加熱のHSAを添加した場合よりも、ゲル化検出時間が遅くなる傾向があった。これによって、予め熱処理を施したHSAを添加することで、攪拌による生物由来の生理活性物質に起因しない凝集またはゲル化をより確実に抑制できることが示された。また、表2には、試料とAL試薬の混和液に、非加熱のヒト血清アルブミン製剤アルブミナーを添加した場合と、アルミブロックヒーターによる加熱処理95°C、5~30分にて予め熱処理を施したアルブミナーを添加した場合のゲル化検出時間を示す。この場合も、混和液中のアルブミン濃度は、いずれの場合も0.25である。表2より判るように、この場合も、予め熱処理を施したアルブミナーを添加した方が、非加熱のアルブミナーを添加した場合よりも、ゲル化検出時間が遅くなる傾向があった。これによって、予め熱処理を施したアルブミナーを添加することで、攪拌による生物由来の生理活性物質に起因しない凝集またはゲル化をより確実に抑制できることが示された。<実施例2>上記の実施例1においては、一般的な光散乱粒子計測装置1及び、比濁計測装置21を用いて、試料とAL試薬の混和液に対してHSAを添加する例について説明したが、本発明を実施するために、試料とAL試薬の混和液に対して自動的にHSAを添加する特別な光散乱粒子計測装置及び、比濁計測装置を用いることとしてもよい。図7には、試料とAL試薬の混和液に対してHSAなどの蛋白質を自動的に添加する蛋白質添加装置13を備えた光散乱粒子計測装置31について示す。図1で説明した光散乱粒子計測装置1との相違点は、蛋白質貯留部13aと、蛋白質添加管13bを有している点である。この蛋白質貯留部13aには、測定に先立ち、熱処理されたHSA溶液を精密に測定された量だけ貯留しておく。そして、測定時に試料とAL試薬の混和液が測定位置にセットされた際に、図示しないスイッチがONされ、例えば小型ポンプ13cによって、蛋白質貯留部13aに空気圧が作用する。そして、蛋白質貯留部13aに貯留されたHSA溶液が、蛋白質添加管13bを介してキュベット内に添加される。本実施例によれば、より簡単に、混和液を攪拌する場合に生じる、エンドトキシンに由来しない凝集を低減することができ、エンドトキシン測定の測定精度を向上することができる。上記の蛋白質添加装置13は蛋白質添加手段に相当する。なお、本実施例における蛋白質添加装置13は、上記の構成によるものに限定されないことは当然である。例えば、精密に吐出量を制御可能な液体吐出装置によって、オートクレーブ滅菌処理されたHSA溶液を、測定時に試料とAL試薬の混和液が測定位置にセットされた際に、吐出するようにしてもよい。あるいは、オートクレーブ滅菌処理されたHSA溶液を必要量吸い上げたスポイトをセットしておき、スポイトの可撓性のポンプ部を圧縮することで、HSA溶液を、ガラス製試料セル4内の混和液に添加するようにしてもよい。なお、熱処理されたHSA溶液を試料とAL試薬の混和液に添加するタイミングは、攪拌子11による攪拌が開始する前であることが望ましい。これによって、より確実に、混和液を攪拌する場合に生じる、エンドトキシンに由来しない凝集を抑制することができる。しかしながら、攪拌子11による攪拌の開始と同時あるいは、攪拌が開始した後であっても、熱処理されたHSA溶液を試料とAL試薬の混和液に添加することで、エンドトキシンに由来しない凝集を抑制する効果は得ることができる。図8には、同様に、試料とAL試薬の混和液に対してHSAなどの蛋白質を自動的に添加する蛋白質添加装置33を備えた比濁計測装置41について示す。図6で説明した比濁計測装置21との相違点は、シリンジ33a、ピストン33b及びピストン押圧部33cからなる蛋白質添加装置33を有している点である。ここでは、シリンジ33aには、オートクレーブ滅菌処理されたHSA溶液が必要量吸い上げられている。そして、測定時に試料とAL試薬の混和液を保持するキュベット22が測定位置にセットされた際に、図示しないスイッチがONされ、ピストン押圧部33cがピストン33bを押圧し、シリンジ33a内のHSA溶液が、キュベット22内に添加される。このような比濁計測装置41によっても、より簡単に、混和液を攪拌する場合に生じる、エンドトキシンに由来しない凝集を低減することができ、エンドトキシン測定の測定精度を向上することができる。なお、本実施例における蛋白質添加装置33も、上記の構成によるものに限定されないことは当然であり、同等の機能を有するものであれば、いかなる装置を使用してもよい。"