"セロビオースリピッドの3次元網目構造からなる、低分子オルガノゲル。セロビオースリピドが、下記構造式I又はIIで表されるセロビオースリピッドである請求項1に記載の低分子オルガノゲル。式I中、R1及びR2は、それぞれ水素又はヒドロキシル基を表す。式II中、R1、R2及びR5は、それぞれ水素又はヒドロキシル基を表す。また、R3及びR4は、それぞれ水素又はアセチル基を表す。mは炭素数2あるいは4のアルキレン基を表す。セロビオースリピドが、構造式I中、R1がヒドロキシル基であり、R2が水素であるセロビオースリピッドであることを特徴とする請求項2に記載の低分子オルガノゲル。請求項1~3のいずれかに記載の低分子オルガノゲルからなるか、あるいは上記低分子オルガノゲルを含有することを特徴とする、抗真菌剤。請求項1~3のいずれかに記載のセロビオースリピドからなることを特徴とする低分子オルガノゲル化剤。化粧品、医薬品、食品又は塗料用の配合剤として用いることを特徴とする、請求項5に記載の低分子オルガノゲル化剤。請求項1~3のいずれかに記載のセロビオースリピドからなることを特徴とする増粘剤。化粧品、医薬品、食品、接着剤又は塗料用の配合剤として用いることを特徴とする、請求項7に記載の増粘剤。セロビオースリピドCLについては、上記したMELとは異なり、その界面化学的性質や自己集合体形成能等の物性研究については、あまり研究が進んでおらず、その有効利用は図られていないのが現状である。本発明の課題は、このような問題点を解消する点にあり、種々の分野においけるCLの利用促進に寄与する新たな物性を見い出し、例えば、CLの有する抗真菌活性を有効に活用しようする点にある。本発明は、上記仮題を解決するため鋭意研究の結果、セロビオースリピドCLが実用上重要な低分子オルガノゲルを形成することを新たに見出したことに基づく。一方、ゲルとは、ゲル形成能力を有する物質ゲル化剤により形成された三次元網目構造中に有機溶媒や水等の流体が含まれている構造体をいい、流体が有機溶媒である場合をオルガノゲル、水である場合をハイドロゲルという。オルガノゲルは、化粧品、医薬品、農薬、食品、接着剤、塗料、樹脂等の種々の分野において、現に利用され、今後も利用分野の拡大が期待されており、上記CLが低分子オルガノゲルを形成可能であることは、抗真菌活性というユニークな性質と相俟って、上記様々な分野でその利用促進に大いに寄与するものであると確信し、本発明を完成するに至った。すなわち、本発明は以下のとおりである。1セロビオースリピッドの3次元網目構造からなる、低分子オルガノゲル。2セロビオースリピドが、下記構造式I又はIIで表されるセロビオースリピッドである上記1に記載の低分子オルガノゲル。式I中、R1及びR2は、それぞれ水素又はヒドロキシル基を表す。式II中、R1、R2及びR5は、それぞれ水素又はヒドロキシル基を表す。また、R3及びR4は、それぞれ水素又はアセチル基を表す。mは炭素数2あるいは4のアルキレン基を表す。3セロビオースリピドが、構造式I中、R1がヒドロキシル基であり、R2が水素であるセロビオースリピッドであることを特徴とする上記2に記載の低分子オルガノゲル。4上記1~3のいずれかに記載の低分子オルガノゲルからなるか、あるいは上記低分子オルガノゲルを含有することを特徴とする、抗真菌剤。5上記1~3のいずれかに記載のセロビオースリピドからなることを特徴とする低分子オルガノゲル化剤。6化粧品、医薬品、食品又は塗料用の配合剤として用いることを特徴とする、上記5に記載の低分子オルガノゲル化剤7上記1~3のいずれかに記載のセロビオースリピドからなることを特徴とする増粘剤。8化粧品、医薬品、食品、接着剤又は塗料用の配合剤として用いることを特徴とする、上記7に記載の増粘剤。本発明で使用するセロビオースリピドCLは低分子でありながら、オルガノゲルを形成するすなわち低分子オルガノゲル。オルガノゲル自体の調製は、それ自体あまり例がなく、まして、低分子化合物によるオルガノゲル形成は極めて希少であり、本願発明の効果は全く予測できず、画期的である。さらに、上記セロビオースリピドCLは、生分解性があり、低毒性で高い安全性を有する他、抗真菌効果も有し、また、幅広い濃度温度範囲で、様々な有機溶媒を取り込んでオルガノゲルを形成することができるため、ゲル化剤、あるいは増粘剤乃至粘度調整剤として、例えば化粧品、医薬品、食品、接着剤又は塗料等の種々の幅広い分野に利用することができる。また、本発明においては有機溶媒としてエタノール等の安全性の高い溶媒も利用できるため、このような溶媒に水に不溶の香料、色素、ビタミン類あるいは医薬成分等の配合成分を溶解してオルガノゲルを形成させることにより、例えば配合成分を徐々に放出するような、化粧品、健康食品、医薬品等を製造することができ、しかも、この場合、セロビオースリピドCL自体が抗真菌効果を有するため、これら製品の保存性、安全性を向上させることができる。以下、本発明について詳述する。セロビオースリピッドCLは、上記背景技術において記載したように、それ自体従来知られた化合物である。CLは、構造式Iの分子構造を有するものと構造式IIの構造を有するものに分けられ、これらの分子構造の違いは生産微生物の相異に基づくが、ともにバイオサーファクタントとして知られている。構造式Iで表されるCLは、置換基R1とR2がそれぞれ水素又はヒドロキシル基である各化合物の混合物の形態で得られる。また、上記構造式IIで表されるCLも混合物の形態で得られることは同様であり、置換基R1~R5が、それぞれ水素又はヒドロキシル基で、mが2~4の範囲内でそれぞれ異なる各化合物の混合物の形で得られる。本発明においてはこのような混合物形態のCLをそのまま使用することができるが、更に精製分離した単独のCL化合物を使用することもできる。このようなセロビオースリピッドは、一般的な方法にしたがって、セロビオースリピッド生産菌を培地で培養することにより得られる。このようなセロビオース生産菌としては、例えば、クリプトコッカス属微生物は主に上記構造式IのCLを生産し、Ustilagoウスチラゴ属の微生物は主に構造式IIのCLを生産する。本発明の構造式IあるいはIIで表されるCLは、有機溶媒単独、あるいは有機溶媒と水が存在する系において自己集合化し有機溶媒を取り込んで、オルガノゲル化する。本発明で用いるCLは、有機溶媒の種類により有機溶媒単独では、オルガノゲル形成が出来ない場合であっても、有機溶媒と水との混合系において、オルガノゲル形成する場合がある。水の添加時期は、CLを有機溶媒に混合した後に添加してもよいし、CLを、予め所定割合で混合した有機溶媒と水との混合液中に溶解させてもよい。このようなゲル化の条件は広く、幅広いCL濃度温度範囲においてオルガノゲルを容易に形成可能である。使用する有機溶媒としては、トルエン等の非極性溶媒、メタノール、エタノール等の各種アルコール類、酢酸エチル、ジメチルスルホ基、N,N-ジメチルホルムアミド等の極性溶媒等が使用できる。本発明においてオルガノゲルは、本発明のCLを有機溶媒と混合後、水を添加することにより、あるいは有機溶媒と水の混合液中で溶解させることにより、より形成されやすくなる。例えば、構造式IのCLの場合、CLの有機溶媒に対する配合量は、使用する有機溶媒によって異なるが、1~10g/Lとするのが好ましく、3g/L以上がより好ましく、6g/Lがより好ましく、10g/Lがより好ましい。CLが3g/L以上で完全なゲルを形成することが可能である。また、水の添加量は、有機溶媒:水の割合が6:4~1:9の割合になるよう添加する。CLと有機溶媒との混合の際、加温することが好ましいが、このときの加温温度は、60~80である。また、本発明におけるオルガノオルガノゲル形成温度は42°C以下であり、室温でも、オルガノゲルを形成することができ、冷却等の特段の操作は必要なく、室温で放置するのみでオルガノゲルを得ることができる。オルガノゲル形成条件については、構造式IIのCLの場合も同様である。CLの場合、オルガノゲル形成は、使用する有機溶剤の種類、有機溶剤に対するCL濃度及び水の添加量及び有機溶剤の種類に影響され、有機溶剤の種類によっては、オルガノゲルが形成されにくいものもあるが、この場合には、CLの配合量を多くして有機溶剤に対するCL濃度を挙げるか、有機溶剤に対する水の添加量を多くするか、あるいはこの両方の手段を講じることによって、オルガノゲルを形成させることができる。このように形成されたCLのオルガノゲルは、CLが抗真菌活性を有するため、真菌剤として使用できる。一方、上記したように、オルガノゲルは、化粧品、医薬品、農薬、食品、接着剤、塗料、樹脂等の種々の分野において利用されており、また、これらの分野においては、製品形態としてエマルジョンの形態がよく用いられているため、本発明のCLは、これらの分野において、ゲル化剤あるいは増粘剤乃至粘度調整剤として用いることができる。特に、本発明によれば、エタノールあるいは酢酸エチル等の溶剤を用いてオルガノゲルを形成でき、これら溶剤は、安全性の点で、化粧品、食品あるいは医薬品等の分野で汎用されているものであり、しかも、本発明のCL自体、低毒性で高い安全性を有する。したがって、例えば、これらの溶剤に、水不溶の香料、色素、ビタミン類あるいは医薬成分等の配合成分を溶解させて、本発明のCLからなるオルガノゲルを形成させることにより、配合成分を徐々に放出する徐放性基剤として、化粧品、食品あるいは医薬品等の分野において使用できる。また、上記したように、本発明において用いるCLは、抗真菌活性を有し、これら製品の保存性あるいは安全性の向上も図れる。さらに、このような抗真菌活性という点から、例えば、上記塗料における増粘剤乃至粘度調整剤として使用は、病院その他の真菌に対する防除を必要とする建物等において好適な塗料を与える。さらに、本発明において使用するCLは生分解性があり、低毒性で高い安全性を有するので、本発明のCLを使用した製品を廃棄する場合にも、環境に脅威を与えることがない。以下に、参考として本発明において使用するCLの製造法について説明する。参考例1使用微生物本発明に係るCLの製造に使用可能な微生物としては、上記クリプトコッカスCryptococcusクリプトコッカス属やウスチラゴUstilago属、シュードザイマPseudozyma属に属し、CLを生産する能力を有するもののであれば特に限定されない。具体的に、上記構造式IのCLを生産する微生物の例としては、例えばクリプトコッカスフミコーラCryptococcushumicola等に属する微生物が挙げられ、構造式IIのCLを生産する微生物の例としては、ウスチラゴメイディスUstilagomaydis、シュードザイマフロキュローサPseudozymaflocculosa、シュードザイマグラミニコーラPseudozymagraminicola等に属する微生物が挙げられる。2使用培地及び培養方法培地は、例えば、一般的な微生物又は酵母に対して一般に用いられる培地を使用でき、特に酵母に用いられる培地が好ましい。このような培地としては、例えば、YPD培地イーストイクストラクト10g、ポリペプトン20g、及びグルコース100gを挙げることができる。さらに、本発明に係るCL製造に利用可能な微生物、特に前記クリプトコッカスフミコーラNBRC1640株を用いてCLを生産する場合の好適な培地組成は、以下のとおりである。ペプトン;0.1~9g/Lが好ましく、1g/Lが特に好ましい酵母エキス;0.1~9g/Lが好ましく、3g/Lが特に好ましい。麦芽エキス;0.1~9g/Lが好ましく、1g/Lが特に好ましい。グルコース;10~200g/Lが好ましく、100g/Lが特に好ましい。本発明に係るCLの製造方法の具体的な工程については、目的に応じて適宜選定することができるが、例えば、種培養、本培養及びCL生産培養の順にスケールアップしていくことが好ましい。これらの培養における、培地並びに培養条件を例示すると以下のとおりである。a種培養;グルコース10g/Lと、酵母エキス3g/L、麦芽エキス3g/L及びペプトン5g/Lの組成の液体培地5mLが入った試験管に1白金耳接種し、25°Cで1日間振とう培養を行う。b本培養;グルコース10g/Lと、酵母エキス3g/L、麦芽エキス3g/L及びペプトン5g/Lの組成の液体培地100mLの入った坂口フラスコにaの培養液を接種して、25°Cで2日間培養を行う。cセロビオースリピッド生産培養;グルコース100g/Lと、酵母エキス3g/L、麦芽エキス3g/L及びペプトン5g/Lの組成の液体培地1.4Lが入ったジャーファメンターに接種して、25°Cで600rpmの撹拌速度で培養を行う。3CLの回収方法CLの回収についても従来公知の脂質の精製方法を用いることができ、例えば、培養終了後、当容積~4容積倍の酢酸エチルで脂質成分を抽出し、酢酸エチルを、エバポレーターを用いて留去して脂質及び糖脂質成分を回収する工程を挙げることができる。その後、この脂質成分を等量の酢酸エチルに溶解し、これをシリカゲルクロマトグラフィーにかけ、クロロホルム、クロロホルム:アセトン70:30、同50:50、同30:70、アセトンの順で溶出させる。各溶液を薄層クロマトグラフィーTLCプレートにチャージし、クロロホルム:メタノール:水=75:25:2容積比で展開する。展開終了後、アンスロン硫酸試薬で糖脂質の存在を確認する。糖脂質の含まれる溶出液を集め、溶媒を留去してCL成分を得ることができる。本発明においては、このようにして得られたCLを、シリカゲルクロマトグラフィー等によりさらに精製し、単独のCL化合物を分離し、この分離したCL化合物を用いることもできるが、混合物の形態で用いても全く支障がない。例えばクリプトコッカスフミコーラを培養して得られるCLは、通常構造式Iで示される各CL化合物の混合物であるが、その主成分は、構造式Iにおいて、R1がヒドロキシル基であり、R2が水素であるCLであり、この主成分の化合物を精製分離して用いてもよい。以下に実施例を示して本発明をより具体的に説明するが、これらは単なる例示であって、本発明の範囲を何ら限定するものではない。実施例1クリプトコッカスフミコーラNBRC1640を培養して得られた、構造式Iで示されるCL混合物を用いて以下のオルガノゲル形成実験を行った。有機溶剤に対し50g/Lの濃度で、上記CLを混合し目視観察1、60°Cで3分程度加温し目視観察2、室温で30分間静置し目視観察3、さらに室温で12時間以上静置目視観察4して、CL混合物の状態を目視観察した。その結果を、表1に示す。その結果、CLを50g/L濃度で、各種有機溶剤と混合することで、透明あるいは不透明なゲルを形成することが分かった。上記表1中に示されるCLが形成するゲルの様子は図1に示す通りである。なお、本実施例2、3における表中の記載において、Sは図1中の溶液、OGは同不透明ゲル、TGは同透明ゲル、PGは同不完全ゲルのそれぞれ状態を示す。また、insと不溶を表す表2。実施例2実施例1でゲルを形成した溶媒に対して、CLの最小ゲル化濃度を測定した。なお、用いたCL実施例1で使用したCLと同様である。試験管に、CLを秤量し、その量が段階的に異なるように投入した後、各種有機溶媒を添加し、CL濃度が段階的に異なる各種溶媒溶液を調製した。その後、60°Cで10分程度加温して、CLを完全に溶解させ、室温に3~4時間静置した後、試験管を倒置逆さまにするして、ゲルを形成しているかどうか判定した。最小ゲル化濃度は、ゲルを形成できるCLの最小量とした。表2に、CLの最小ゲル化濃度を求めた結果を記載する。実施例3実施例1で用いたCLと以下の各種有機溶媒の混合液に水を加え、ゲルを形成するかどうかを目視観察した。まず、試験管直径10mmに、CLを秤量し、その量が1~10g/Lの間で段階的に異なるように投入した後、各種有機溶媒を添加した。次いで、80°Cで10分程度加温してCLを完全に溶解させた。この後、使用した有機溶媒に対する使用割合を段階的に変えて水を添加し、CL濃度が段階的に異なる各種溶媒と水の混合溶液を得た。この後、室温に3~4時間静置した後、試験管を倒置逆さまにするして、ゲルを形成しているかどうか判定した。その結果を表3に示す。表3の結果から明らかなように、CLは、有機溶媒DMSO、1,3-BG、メタノール、エタノールおよび水の存在下で、透明あるいは不透明なゲルを形成した。また、この時のゲル形成の様子は、CLの濃度と有機溶媒と水の比に依存して変化することも明らかである。また、表3から、各種有機溶媒と水の混合液に対する、CLの最小ゲル化濃度が分かる。例えば、DMSO:水が6:4のとき、最小ゲル化濃度は5g/Lであり、DMSO:水が5:5のとき、最小ゲル化濃度は4g/Lとなる。さらに、最小ゲル化濃度から、CLの形成するゲルの溶媒保持率は、1:333以下であることが分かる。実施例4オルガノゲルの熱力学的特性試験管直径10mmに、実施例1で用いたCLを500mg/L秤量した後、13BGと水の混合液5:5を添加し、80°Cで10分程度加温して、CLを完全に溶解させ、室温に3~4時間静置して調オルガノゲルを製した。調製したゲルを、10mg分取して、測定用の容器に充填した。その後、熱分析装置DSC7020SII社製で、示差走査熱量測定DSCを行った。コントロールとして、13BGと水の混合液5:5を用いた。その結果を、図2に示す。その結果、80°Cから5°Cまでの冷却過程5°C/minで、42°C付近にピークが得られた。このピークから、CLゲルは、42°C以下で形成することが分かる。実施例5オルガノゲルの抗真菌活性ガラス瓶直径50mmに、実施例1で用いたCLを1000mg秤量した後、13BGと水の混合液5:5を10ml添加し、80°Cで10分程度加温して、CLを完全に溶解させ、室温に3~4時間静置してオルガノゲルを調製した。真菌としては、日和見感染菌として知られているCandidaalbicansとCandidaglabrataを使用した。各菌体は、2mlのYM培地で2日間培養した後、YM寒天培地に塗り広げた。その後、寒天培地上に、CLゲルをスポットした。この時、50の13BGとYM液体培地をコントロールとしてスポットした。3日間25°Cで静置した後の様子を図3に示す。図3の結果から、CLゲルの周辺にハロが形成されており、抗真菌活性を有することが分かる。実施例6本実施例においてはウスチラゴメイディスUstilagomaydisを培養して得た構造式IIで示されるCL混合物を用いて、オルガノゲル形成実験を行った。酢酸エチルに対し50g/Lの濃度で上記CLを混合し、80°Cで3分程度加温し、さらに室温で12時間以上静置して、CL混合物の状態を目視観察した。その結果を、図4に示す。その結果、50g/L濃度で、CLが不透明なオルガノゲルを形成することが分かった。実施例7CLゲルの三次元ネットワークの観察実施例1で用いたCL70mgを、試験管直径10mmに秤量した後、10mlのエタノールと水の混合液3:7を添加し、80°Cで10分程度加温して、CLを完全に溶解させ、室温に1~2時間静置して調製した。調製したゲルを、分取して、測定用の基板高配向グラファイトHOPGに塗布した。その後、プローブ顕微鏡でゲルを観察した。その結果を、図5に示す。プローブ顕微鏡観察の結果から、CLゲルが三次元ネットワークを形成していることが確認できた。"