"遺伝子物質を固定化した医療用粒子であって、粒子状の基材の表面に、重合体が固定化されており、前記重合体は、側鎖に親水性基を有する第1繰り返しユニットと、側鎖の末端に遺伝子物質を有する第2繰り返しユニットを有する、ことを特徴とする医療用粒子。前記第2繰り返しユニットは、アルキレングリコール残基を有するエチレン系不飽和重合性モノマーに由来するものであり、その側鎖末端に遺伝子物質を結合させたものである請求項1に記載の医療用粒子。前記重合体が前記第1繰り返しユニットと前記第2繰り返しユニットを有するランダム共重合体である請求項1または2に記載の医療用粒子。前記第1繰り返しユニットと、前記第2繰り返しユニットとの共重合比第1繰り返しユニット/第2繰り返しユニットが、97/3~50/50である請求項1ないし3いずれか1項に記載の医療用粒子。前記遺伝子物資が、前記第2繰り返しユニットの末端に導入した活性エステル基を介して固定化する請求項1ないし4いずれか1項に記載の医療用粒子。前記活性エステル基は、p-ニトロフェニル活性エステル基、N-ヒドロキシスクシンイミド活性エステル基、フタル酸イミド活性エステル基、5-ノルボルネン-2、3-ジカルボキシイミド活性エステル基より選ばれる一種以上である請求項1ないし5いずれか1項に記載の医療用粒子。前記第1繰り返しユニットは、アルキレングリコール残基を有するエチレン系不飽和重合性モノマーに由来するものである請求項1ないし6いずれか1項に記載の医療用粒子。前記アルキレングリコール残基を有するエチレン系不飽和重合性モノマーが、下記式1で表されるモノマーである請求項7に記載の医療用粒子。前記粒子状の基材が、無機材料または樹脂材料で構成されている請求項1ないし8のいずれか記載の医療用粒子。前記無機材料が、無機酸化物である請求項9に記載の医療用粒子。前記無機酸化物が、酸化ケイ素である請求項10に記載の医療用粒子。前記樹脂材料が、アクリル酸エステル樹脂である請求項9に記載の医療用粒子。前記アクリル酸エステル樹脂が、ポリメタクリル酸メチル樹脂である請求項12記載の医療用粒子。前記重合体が、前記第1繰り返しユニット、前記第2繰り返しユニット、および側鎖にシランカップリング剤を有するユニットからなり、前記基材にシランカップリング剤を介して結合されている請求項1ないし13いずれか1項に記載の医療用粒子。遺伝子物質が、DNA、cDNA、オリゴDNA、RNA、またはmRNAの少なくとも一種から選ばれる請求項1ないし14いずれか1項に記載の医療用粒子。請求項1ないし15いずれか1項に記載の医療用粒子上の遺伝子物質を介して、相補的遺伝子、または遺伝子結合性蛋白質を補足することを特徴とする、遺伝子の捕捉方法。本発明の目的は、遺伝子物質の固定化能力に優れ、かつ、卓上小型遠心機など汎用の設備で迅速簡単に回収できる医療用粒子およびその遺伝子物質固定化医療用粒子を用いた遺伝子物質の捕捉方法を提供することにある。このような目的は、下記1~16に記載の本発明により達成される。1遺伝子物質を固定化した医療用粒子であって、粒子状の基材の表面に、重合体が固定化されており、前記重合体は、側鎖に親水性基を有する第1繰り返しユニットと、側鎖の末端に遺伝子物質を有する第2繰り返しユニットを有する、ことを特徴とする医療用粒子。2前記第2繰り返しユニットは、アルキレングリコール残基を有するエチレン系不飽和重合性モノマーに由来するものであり、その側鎖末端に遺伝子物質を結合させたものである1に記載の医療用粒子。3前記重合体が前記第1繰り返しユニットと前記第2繰り返しユニットを有するランダム共重合体である1または2に記載の医療用粒子。4前記第1繰り返しユニットと、前記第2繰り返しユニットとの共重合比第1繰り返しユニット/第2繰り返しユニットが、97/3~50/50である1ないし3いずれか1項に記載の医療用粒子。5前記遺伝子物資が、前記第2繰り返しユニットの末端に導入した活性エステル基を介して固定化する1ないし4いずれか1項に記載の医療用粒子。6前記活性エステル基は、p-ニトロフェニル活性エステル基、N-ヒドロキシスクシンイミド活性エステル基、フタル酸イミド活性エステル基、5-ノルボルネン-2、3-ジカルボキシイミド活性エステル基より選ばれる一種以上である1ないし5いずれか1項に記載の医療用粒子。7前記第1繰り返しユニットは、アルキレングリコール残基を有するエチレン系不飽和重合性モノマーに由来するものである1ないし6いずれか1項に記載の医療用粒子。8前記アルキレングリコール残基を有するエチレン系不飽和重合性モノマーが、下記式1で表されるモノマーである7に記載の医療用粒子。9前記粒子状の基材が、無機材料または樹脂材料で構成されている1ないし8のいずれか記載の医療用粒子。10前記無機材料が、無機酸化物である9に記載の医療用粒子。11前記無機酸化物が、酸化ケイ素である10に記載の医療用粒子。12前記樹脂材料が、アクリル酸エステル樹脂である9に記載の医療用粒子。13前記アクリル酸エステル樹脂が、ポリメタクリル酸メチル樹脂である12記載の医療用粒子。14前記重合体が、前記第1繰り返しユニット、前記第2繰り返しユニット、および側鎖にシランカップリング剤を有するユニットからなり、前記基材にシランカップリング剤を介して結合されている1ないし13いずれか1項に記載の医療用粒子。15遺伝子物質が、DNA、cDNA、オリゴDNA、RNA、またはmRNAの少なくとも一種から選ばれる1ないし14いずれか1項に記載の医療用粒子。161ないし15いずれか1項に記載の医療用粒子上の遺伝子物質を介して、相補的遺伝子、または遺伝子結合性蛋白質を補足することを特徴とする、遺伝子の捕捉方法。本発明によれば、遺伝子物質を固定した粒子で、かつ、卓上小型遠心機など汎用の設備で迅速簡単に回収できる医療用粒子およびそれを用いた遺伝子物質の捕捉方法を得ることができる。以下、本発明の遺伝子物質固定化医療用粒子および遺伝子物質の捕捉方法について詳細に説明する。本発明の遺伝子物質固定化医療用粒子は、遺伝子物質固定化した医療用粒子であって、粒子状の基材の表面に、重合体が固定化されており、前記重合体は、側鎖に親水性基を有する第1繰り返しユニットと、側鎖の末端に遺伝子物質を有する第2繰り返しユニットと、を有することを特徴とする。また、本発明の遺伝子物質の捕捉方法は、上記に記載の遺伝子物質医療用粒子を用い、固定化した遺伝子物質に相補的な遺伝子を捕捉することを特徴とする。ここで述べる遺伝子物質とは、特に限定するものではないが、DNA、cDNA、オリゴDNA、RNA、またはmRNAの少なくとも一種から選ばれるものが好ましい。DNA、cDNA、オリゴDNAの場合は、固定化されるものは1本鎖の状態であることが好ましい。これにより相補的な遺伝子群を捕捉することが可能となる。また、遺伝子結合性蛋白質を補足する場合は、1本鎖でも2本鎖でもどちらでも良い。前記粒子状の基材は、特に限定されるものではなく、有機材料、無機材料を問わず用いることができる。有機材料としては、例えばアフィニティクロマトグラフィーの担体として用いられる多孔性のアガロース粒子商品名:Sepharose、デキストラン粒子商品名:Sephadexの他に、ポリアクリルアミドゲル商品名:Bio-GelP、バイオラッド社、ポリスチレン、エチレン-無水マレイン酸共重合物、ポリメタクリル酸メチル等の粒子が挙げられる。特に、ポリメタクリル酸メチルの粒子が、硬度が高い、水中での遠心分離が可能、さらには架橋させると耐薬品性が高まるといった理由から好適である。また、無機材料としては、金、銀、白金、パラジウム、イリジウム、ロジウム、オスミウム、鉄、銅、コバルト、およびこれらの合金や無機酸化物等が挙げられる。これらの中でも無機酸化物が粒子自体の強度が高い点で好ましい。中でも、酸化ケイ素が取り扱いやすく最も好ましい。前記粒子状の基材の平均粒径は、目的および用途に応じて適宜選択される。特に、無機物の場合、粒径の制御が困難な乳化重合や懸濁重合で有機物の粒子を製造する方法に比較して、粒径の制御が容易である。具体的に、本発明の医療用粒子に用いる基材の粒径としては、用途によっても異なるが、平均粒径が数nm~100μm程度のものが好ましい。特には、100nm~50μmが好ましく、最も1μm~40μmが好ましい。前記基材の平均粒径が前記範囲内であると、特に生理活性物質の捕捉量とハンドリングの良さとのバランスに優れる。このような平均粒径は、例えば粒度分布計で測定することができる。また、粒径のそろったコア粒子を用いることによりフローサイトメトリーにも利用可能となる。本発明の医療用粒子は、前記粒子状基材の表面に、遺伝子物質を固定化したもので、粒子状の基材の表面に、遺伝子物質を含む重合体を有するものである。遺伝子物質を含む重合体の導入方法については特に限定するものではない。この遺伝子物質を含む重合体は、粒子状表面に遺伝子物質を含む重合体を塗布、コーティングしても良いし、あらかじめ遺伝子物質と反応する官能基を有する重合体を粒子表面に塗布、コーティングした後、遺伝子物質を反応させても良い。最も好ましくは、遺伝子物質と反応する官能基を有する重合体を構成するモノマーを粒子表面で重合させた後、遺伝子物質を反応させても良い。この場合、核となる粒子の表面に重合性官能基、または連鎖移動基を導入し、該粒子と重合性モノマーを混合し、次いで重合反応を進行させることにより、核となる粒子表面に高分子化合物を含む層を形成する方法が好適に用いられる。この方法によりすべて共有結合で遺伝子物質を含む安定した医療用粒子を得ることができる。本発明の粒子表面に導入する重合性官能基としては、ビニル基、アリル基、メタクリル基、エポキシ基、スチレン基等が挙げられるが、重合性に優れている点でメタクリル基が好ましい。本発明の粒子表面に導入する連鎖移動基としては、メルカプト基、アミノ基等が挙げられるが、反応性に優れている点でメルカプト基が好ましい。粒子表面に重合性官能基、または連鎖移動基を導入する方法としては、特に限定されないが、重合性官能基、または連鎖移動基を有するシランカップリング剤と核となる粒子表面の官能基との共有結合を形成させる方法が好ましい。重合性官能基を有するシランカップリング剤としては、例えば、3-メタクリロキシプロピルジメチルメトキシシラン、3-メタクリロキシプロピルジエチルメトキシシラン、3-メタクリロキシプロピルジメチルエトキシシラン、3-メタクリロキシプロピルジエチルエトキシシラン、3-メタクリロキシプロピルメチルジメトキシシラン、3-メタクリロキシプロピルエチルジメトキシシラン、3-メタクリロキシプロピルメチルジエトキシシラン、3-メタクリロキシプロピルエチルジエトキシシラン、3-メタクリロキシプロピルトリメトキシシラン、3-メタクリロキシプロピルトリエトキシシラン等が挙げられるが、反応性、及び入手性の点から3-メタクリロキシプロピルジメチルメトキシシランや3-メタクリロキシプロピルジメチルエトキシシランが好ましい。これらのシランカップリング剤は、単独または2種以上の組み合わせで用いられる。連鎖移動基を有するシランカップリング剤としては、例えば3メルカプトプロピルトリメトキシシラン、3メルカプトプロピルメチルジメトキシシラン、3メルカプトプロピルジメチルメトキシシラン、3メルカプトプロピルトリエトキシシラン、3メルカプトプロピルメチルジエトキシシラン、3メルカプトプロピルジメチルエトキシシラン、メルカプトメチルトリメトキシシラン、メルカプトメチルメチルジメトキシシラン、メルカプトメチルジメチルメトキシシラン、メルカプトメチルトリエトキシシラン、メルカプトメチルメチルジエトキシシラン、メルカプトメチルジメチルエトキシシランなどが挙げられるが、入手性から3メルカプトプロピルジメチルメトキシシランや3メルカプトプロピルジメチルエトキシシランが好ましい。これらのメルカプトシラン化合物は、単独または2種以上の組み合わせで用いられる。これらのシランカップリング剤は、単独または2種以上の組み合わせで用いられる。重合性官能基、または連鎖移動基を有するシランカップリング剤を用いて、重合性官能基、または連鎖移動基と核となる粒子表面の官能基との共有結合を形成させる方法は特に制限されるものではないが、例えば、pH2~4の酸性水溶液に重合性官能基、または連鎖移動基を有するシランカップリング剤を0.01~1.0mol/Lとなるように添加し、撹拌混合して加水分解した後、核となる粒子を投入して10~100°Cで5~180分間撹拌し、次いで、20~100°Cに加熱して粒子を乾燥させて行う。核となる粒子と重合性官能基、または連鎖移動基を有するシランカップリング剤の使用割合は特に制限されるものではないが、通常核となる粒子1gに対し、重合性官能基、または連鎖移動基を有するシランカップリング剤0.1~10mmolの割合で用いられる。酸性水溶液は特に限定されるものではないが、酢酸水溶液、塩酸水溶液等が用いられる。なかでも、取り扱いが比較的容易な酢酸水溶液が好ましい。前記重合体は、側鎖に親水性基を有する第1繰り返しユニットと、側鎖の末端に遺伝子物質を有する第2繰り返しユニットと、を有する。すなわち、側鎖に親水性基を有する第1繰り返しユニットが、検出対象以外のタンパク質等の非特異吸着を抑制し、側鎖の末端に遺伝子物質を有する第2繰り返しユニットが相補的遺伝子物質を捕捉することができるものである。前記側鎖に親水性基を有する第1繰り返しユニットは、例えばアルキレングリコール残基を有するエチレン系不飽和重合性モノマー、ホスホリルコリン基を有するエチレン系不飽和重合性モノマー等に由来するものである。これらの中でもアルキレングリコール残基を有するエチレン系不飽和重合性モノマーに由来するものが好ましい。これにより、血清中に含まれるタンパク質の非特異吸着を大きく抑制することができる。具体的にアルキレングリコール残基を有するエチレン系不飽和重合性モノマーは、下記式1で示されるように、メタアクリル基と炭素数1~10のアルキレングリコール残基Yの連鎖からなる化合物であることが好ましい。前記式1中のアルキレングリコール残基Yの炭素数は1~10であり、好ましくは1~6であり、より好ましくは2~4であり、更に好ましくは2~3であり、最も好ましくは2である。炭素数が前記範囲内であると、特に非特異吸着の抑制に優れる。また、アルキレングリコール残基Yの繰り返し数qは、特に限定されるものではないが、好ましくは1~100の整数であり、より好ましくは2~100の整数であり、更に好ましくは2~95の整数であり、最も好ましくは20~90の整数である。前記繰り返し数qが前記範囲内であると、特に非特異吸着の抑制に優れる。なお、繰り返し数qが、2以上100以下の場合は、繰り返されるアルキレングリコール残基Yの炭素数は同一であっても、異なっていてもよい。前記アルキレングリコール残基を有するエチレン系不飽和重合性モノマーとしては、具体的にはメトキシポリエチレングリコールメタアクリレート、エトキシポリエチレングリコールメタアクリレート、2-ヒドロキシエチルメタアクリレート、2-ヒドロキシプロピルメタアクリレート及びその水酸基の一置換エステル、2-ヒドロキシブチルメタアクリレート及びその水酸基の一置換エステル、グリセロールモノメタアクリレート、ポリプロピレングリコールを側鎖とするメタアクリレート、2-メトキシエチルメタアクリレート、2-エトキシエチルメタアクリレート、メトキシジエチレングリコールメタアクリレート、エトキシジエチレングリコールメタアクリレート、エトキシポリエチレングリコールメタアクリレート等が挙げられるが、目的とする生理活性物質以外の成分の非特異的吸着が少ないこと及び入手性からメトキシポリエチレングリコールメタクリレートまたはエトキシポリエチレングリコールメタクリレートが好ましい。前記第2繰り返しユニットは、例えば側鎖にアルキレングリコール残基を有するエチレン系不飽和重合性モノマーや側鎖にグリシジル基を有するエチレン系不飽和重合性モノマー等に由来し、さらに側鎖の先端に上述した遺伝子物質を結合したものが挙げられる。これらの中でも、側鎖にアルキレングリコール残基を有するエチレン系不飽和重合性モノマーに由来するユニットに質遺伝子物質を結合したものが好ましい。これにより、非特異吸着をより抑制することができる。また、第2繰り返しユニットは、下記式2で示されるモノマーに由来するユニットのWを用いて遺伝子物質を固定化したものであっても良い。式2中のWは、活性エステルであり、具体的には例えばp-ニトロフェニル活性エステル基、N-ヒドロキシスクシンイミド活性エステル基、フタル酸イミド活性エステル基、5-ノルボルネン-2、3-ジカルボキシイミド活性エステル基等が挙げられるが、中でもp-ニトロフェニル活性エステル基又はN-ヒドロキシスクシンイミド活性エステル基が好ましく、p-ニトロフェニル活性エステル基が最も好ましい。これにより、遺伝子物質と、活性エステルの反応性を向上することができ、第2繰り返しユニットの側鎖の末端に遺伝子物質を配置することが容易となる。前記重合体の前述した第1繰り返しユニットと、第2繰り返しユニットとの共重合比第1繰り返しユニット/第2繰り返しユニットは、特に限定されないが、97/3~50/50であることが好ましく、特に95/5~70/30であることが好ましい。共重合比が前記範囲内であると、特に非特異吸着を効果的に抑制するとともに、遺伝子物質の捕捉効果に優れる。前記共重合比は、例えばX線光電子分光分析XPSで元素組成を評価することで算出できる。前記重合体は、第1繰り返しユニットと第2繰り返しユニットを含むランダム共重合体であることが好ましい。これにより、第2繰り返しユニットの側鎖の末端に存在する遺伝子物質が分散するために、有効に作用することができる。前記重合体の重量平均分子量は、特に限定されないが、5000~1000000であることが好ましく、特に10000~100000であることが好ましい。重量平均分子量が前記範囲内であると、合成時のハンドリングがよく、また、非特異吸着を効果的に抑制することができる。本発明の医療用粒子では、前記第1繰り返しユニット、前記第2繰り返しユニット、および側鎖にシランカップリング剤を有するユニットからなる重合体が、前記基材にシランカップリング剤を介して結合されていても良い。これにより、ポリマーがビーズから脱離するのを防ぐことができる。前記側鎖にシランカップリング剤を有するユニットとしては、メタクリロキシプロピルジメチルメトキシシラン、メタクリロキシプロピルジメチルエトキシシラン、メタクリロキシプロピルメチルジメトキシシラン、メタクリロキシプロピルメチルジエトキシシラン、メタクリロキシプロピルトリメトキシシラン、メタクリロキシプロピルトリエトキシシランに由来するものが挙げられる。シランカップリング剤により、粒子に結合した重合体を形成する具体的な方法としては、無機酸化物の場合は、表面に存在する水酸基との間のカップリング反応で容易に結合させることができる。前記シランカップリング剤を用いることで、ポリマーがビーズから脱離することを防ぐことができることから、医療用粒子しての使用において、繰り返される加熱処理や、洗浄工程において、ポリマーの溶解を防ぐことが可能であり、さらに、ポリマーの脱離に伴い発生する、非特異吸着の劣化が抑制され、化学的、物理的安定した医療用粒子を提供することが可能となる。また、検出対象以外の物質等に対する非特異吸着が少なく、かつ、検出対象は、相補的な遺伝子の高い反応性により、粒子表面に捕捉することが可能であるので、S/N比の高い医療用粒子を提供することができる。重合体固定ビーズの作製前記重合体固定ビーズの作製について述べる。本発明のビーズの合成方法は、特に限定されるものではないが、合成の容易さから、ビーズ粒子表面に、重合性官能基を有するシランカップリング剤を固定化し、前記の遺伝子物質を固定化する官能基を有するエチレン系不飽和重合性モノマー、アルキレングリコール残基を有するエチレン系不飽和重合性モノマー、および該ビーズを含む混合物を、重合開始剤存在下、溶媒中でラジカル重合することが好ましい。溶媒としてはそれぞれのエチレン系不飽和重合性モノマーが溶解するものであればよく、例えば、2-ブタノン、メタノール、エタノール、t-ブチルアルコール、ベンゼン、トルエン、テトラヒドロフラン、ジオキサン、ジクロロメタン、クロロホルムなどを挙げることができる。これらの溶媒は、単独または2種以上の組み合わせで用いられる。重合開始剤としては通常のラジカル開始剤ならいずれでもよく、例えば、2,2’-アゾビスイソブチルニトリル以下AIBNという、1,1’-アゾビスシクロヘキサン-1-カルボニトリルなどのアゾ化合物、過酸化ベンゾイル、過酸化ラウリルなどの有機過酸化物などを挙げることができる。本発明の高分子化合物の化学構造は、その結合方式がランダム、ブロック、グラフトなどいずれの形態をなしていてもかまわない。遺伝子物質の固定化本発明において遺伝子物質をビーズ上に固定化する際には、遺伝子物質を溶解または分散させた液中に重合体固定ビーズを分散させる方法が簡便で好ましい。なお、遺伝子物質を1本鎖にした後、溶解又は分散させた液体を付着する方法とより好ましい。この際、遺伝子物質を1本鎖にする方法は、DNAのTm以上の温度で加熱した後、氷冷する方法が簡便で好ましい。遺伝子物質を溶解する液体のpHは5.0~11.0であることが好ましく、pH6.0~10.0がより好ましい。この範囲外だと、遺伝子物質が変性、分解する恐れがある。また、固定化する際は重合体遺伝子物質にダメージを与えない範囲で加熱してもよい。遺伝子物質付着後は、固相表面の親水基の特性により、界面活性剤を含む水や緩衝液で洗浄することで、別の物質の固相表面への非特異吸着を抑制することが可能となる。また、遺伝子物質を固定化する官能基をブロッキングするとさらに非特異吸着を抑制することが可能となる。ブロッキング剤は遺伝子物質を固定化する官能基に応じて適宜選択できるが、たとえば活性エステル基の場合は、2-アミノエタノールなどが好適に用いられる。<実施例1>重合体固定ビーズの作製メタクリロキシプロピルジメチルメトキシシランGelest社製SIM6486.513gをpH3.0の酢酸水溶液50mLとエタノール50mLとの混合液に添加し、シランカップリング剤を加水分解した後に、シリカビーズ平均粒径5μm、宇部日東化成株式会社製ハイプレシカTS10gを投入し70°Cで2時間攪拌した後、吸引ろ過により反応溶液からシリカビーズを回収し、100°Cで1時間加熱した。その後、エタノールで分散させてよく振盪した後、遠心分離により上澄みを除去し乾燥させた。数平均分子量Mn=約475のポリエチレングリコールメチルエーテルメタクリレート別名メトキシポリエチレングリコールメタクリレート、以下PEGMA475と記載、Aldrich社製、p-ニトロフェニルオキシカルボニルエチレングルコールメタクリレートMEONPをエタノールに溶解させ、モノマー混合溶液を作製した。総モノマー濃度は0.2mol/L、それぞれのモル比はPEGMA475、MEONPの順に80:20である。そこにAIBNを0.004mol/Lになるように添加し、均一になるまで撹拌した。その後、上記のメタクリロキシプロピルジメチルメトキシシランで処理したシリカビーズ10gを投入し、アルゴンガス雰囲気下、70°Cで22時間反応させた。次いで、遠心分離により反応溶液からシリカビーズを回収し、ジメチルスルホキシドに分散させ、よく振盪した後、吸引ろ過によりビーズを回収し、乾燥させた。オリゴDNA固定化ビーズの作製前記の重合体固定ビーズ5mgに、DNA固定化用バッファ住友ベークライト製、DNA固定化用96ウェルプレートキット、BS-61602、付属に溶解させたCy3標識オリゴDNAggaatttcgctaccttaggaccgttatagttacg、34Mer、末端アミノ基を添加し、57°Cで一晩加熱して固定化した。Cy3標識オリゴDNAを固定化したビーズを純水で3回洗浄し、固定化されていないオリゴDNAを除去した。ビーズを純水に分散させた後、スライドガラス上に滴下し分散させ、蛍光顕微鏡で観察した。結果を図1に示す。表面処理ビーズに対しオリゴDNA固定化を行った場合、明瞭な蛍光が観察された。<実施例2>オリゴDNA固定化ビーズのハイブリまず、実施例1で作製した重合体固定ビーズにオリゴDNAを固定化した。具体的には当該ビーズ20mgを100pmolのオリゴDNA含有固定化液100μLに分散させ、57°Cで一晩加熱。反応終了後、純水で3回洗浄。さらに95°Cで10分間加熱、氷で急冷した。次に、オリゴDNAを固定化したビーズにビオチン標識されたターゲットDNAをハイブリさせた。具体的には、所定量のビオチン標識されたターゲットDNAを溶解したハイブリ液100μLを95°Cで10分間加熱、この溶液をオリゴDNA固定化ビーズ2mgに加え、65°C3時間転倒混和。固定されなかったターゲットDNAを洗浄により除去した。さらに、ビオチン標識されたターゲットDNAをハイブリさせたビーズと、HRP標識ストレプトアビジンと反応させた。具体的には、0.1μgmLに調製したHRP標識ストレプトアビジンのPBS溶液1mLを添加し、37°C15分転倒混和。反応しなかったHRP標識ストレプトアビジンは洗浄により除去した。HRP標識ストレプトアビジンと反応させたビーズをぺルオキシダーゼ発色キットで発色させ、上清を純水で4倍に希釈して吸光度を測定した450nm。<実施例3>本発明の遺伝子固定化ビーズにハイブリした遺伝子が、脱ハイブリが可能かどうかを検証した。具体的には、実施例2でハイブリさせたビーズを95°Cで10分加熱、PBSで3回洗浄した。こうして得られたビーズを、実施例2と同様、0.1μgmLに調製したHRP標識ストレプトアビジンのPBS溶液1mLを添加し、37°C15分転倒混和。反応しなかったHRP標識ストレプトアビジンは洗浄により除去した。HRP標識ストレプトアビジン反応させたビーズをぺルオキシダーゼ発色キットで発色させ、上清を純水で4倍に希釈して吸光度を測定した450nm。<比較例1>表面処理をしていないシリカビーズ平均粒径5μm、宇部日東化成株式会社製、ハイプレシカTSに対しても実施例1と同様のCy3標識オリゴDNA固定化の処理を行った。図1によると、表面処理ビーズに対しオリゴDNA固定化を行った場合、明瞭な蛍光が観察された。一方、未処理ビーズに対し同様にオリゴDNA固定化を行った場合は、蛍光がほとんど観察されなかった。このことから、重合体固定ビーズには末端にアミノ基を有するオリゴDNAを固定化できることが分かった。また、オリゴDNAの処方量の増加とともに、固定化量が増加した。<比較例2>実施例2において、オリゴDNAを添加しないビーズを作製、このビーズに対しても実施例2と同様、ビオチン標識されたターゲットDNAをハイブリさせたのち、HRP標識ストレプトアビジン反応させ、ぺルオキシダーゼ発色キットで発色した。図2より、ターゲットDNAをハイブリさせたビーズはターゲット量に応じてシグナル上昇。95°Cで加熱した後のビーズはシグナルが減少した。このことよりビーズに固定したDNAにターゲットDNAをハイブリ可能であり、また、実施例3に記載した加熱による脱ハイブリも可能であることが示された。"