"一般式Iで表されるステリルグルコピラノシドを含有することを特徴とする発毛育毛料。一般式I但し、式中、Zは、シクロペンタノヒドロフェナントレン環の3位に結合する水酸基を除いたステロール残基を示す。前記一般式Iにおけるステロール残基は、コレステロール残基、β-シトステロール残基、スチグマステロール残基、カンペステロール残基又はブラジカステロール残基であることを特徴とする請求項1に記載の発毛育毛料。前記ステリルグルコピラノシドは、コレステリルグルコピラノシドであることを特徴とする請求項2に記載の発毛育毛料。前記ステリルグルコピラノシドは、天然由来物質及び/又は合成品であることを特徴とする請求項1~3のいずれかに記載の発毛育毛料。前記コレステリルグルコピラノシドは、鳥類の羽毛から得られたものであることを特徴とするものである請求項3に記載の発毛育毛料。前記特許文献3に記載のスチグマステロール配糖体は、スチグマステロールのマルトシド、マルトトリオシド、マルトテトラオシド又はマルトペンタオシドである。育毛料中の前記フチグマステロール配糖体の含有量は、0.0005~5質量実施例では1質量であって、育毛料としての通常の濃度である。このスチグマステロールは、大豆油、やし油、ワタの種子など、植物界に広く分布しているもので、コレステロールは動物界に分布するステロールである。このように、トリテルペノイド配糖体やステロイド配糖体は、発毛、青毛効果が期待され、様々な試みがなされているが、これまで、十分な発毛、育毛効果は得られていないのが実状である。この発明はかかる現状に鑑み、男性および女性に対して優れた発毛、育毛効果を有する新規な発毛育毛料を提供することを目的とするものである。発明者は、先に家禽類の羽毛を原料とする水溶性ケラチン誘導体を開発するとともに、この水溶性ケラチン誘導体が、高エネルギー波吸収剤、発光材料、耐侯性改善剤、撥水剤などとして有用であることを見出した。この水溶性ケラチン誘導体について、さらに研究の結果、このケラチン誘導体は、剃毛マウスに対して発毛効果を有することを見出すとともに、その中の発毛に対する有効成分が、コレステリルグルコピラノシドであることを突き止めた。さらに研究を重ねた結果、前記コレステリルグルコピラノシド以外のステリルグルコピラノシドも発毛育毛効果を有すること、そして意外にもある濃度範囲の超希薄溶液において、優れた発毛育毛効果を発揮することを見出した。この発明は、かかる知見に基づいて完成したものである。すなわち、この発明の請求項1に記載の発明は、一般式Iで表されるステリルグルコピラノシドを含有することを特徴とする発毛育毛料である。但し、式中、Zは、シクロペンタノヒドロフェナントレン環の3位に結合する水酸基を除いたステロール残基を示す。また、この発明の請求項2に記載の発明は、請求項1に記載の発毛育毛料において、前記一般式Iにおけるステロール残基は、コレステロール残基、β-シトステロール残基、スチグマステロール残基、カンペステロール残基又はブラジカステロール残基であることを特徴とするものである。また、この発明の請求項3に記載の発明は、請求項1に記載の発毛育毛料において、前記ステリルグルコピラノシドは、コレステリルグルコピラノシドであることを特徴とするものである。また、この発明の請求項4に記載の発明は、請求項1~3のいずれかに記載の発毛育毛料において、前記ステリルグルコピラノシドは、天然由来物質及び/又は合成品であることを特徴とするものである。また、この発明の請求項5に記載の発明は、請求項3に記載の発毛育毛料において、前記コレステリルグルコピラノシドは、鳥類の羽毛から得られたものであることを特徴とするものである。この発明の発毛育毛料は、ステリルグルコピラノシド、好ましくはコレステリルグルコピラノシドを有効成分とするもので、希薄濃度においても、優れた発毛育毛効果を発揮するものである。この発明の発毛育毛料は、有効成分として、一般式Iで表されるステリルグルコピラノシドを含有することを特徴とするものである。前記一般式Iにおいて、Zは、シクロペンタノヒドロフェナントレン環の3位に結合する水酸基を除いたステロール残基である。このZで表されるステロール残基としては、下記式2で表されるコレステロール、β-シトステロール、スチグマステロール、カンペステロールおよびブラジカステロールの残基を挙げることができる。前記コレステロールは、動物界に広く分布しているステロールである。前記β-シトステロールは、代表的な植物ステロールで、通常カンペステロール、スチグマステロールなどと共存していることが多い。綿実油、タール油、大豆油などの主ステロールである。前記スチグマステロールは、大豆油に豊富に含まれ、やし油、綿の種子など植物界に広く分布しており、β-シトステロール、カンペステロールと共存することが多い。前記カンペステロールは、西洋アブラナの種子、大豆、小麦胚芽、ナタネなどに含まれている。前記ブラジカステロールは、アプラナ科植物の種子、海藻、貝類などに含まれている。これらのステリルグルコピラノシドは、異性体が存在するものもあるが、いずれの異性体でもよく、また、グルコピラノシル結合においてはα体、β体のいずれでもよい。この発明においては、ステリルグルコピラノシドとしては、発毛、育毛効果の点から、コレステリルグルコピラノシドが好ましい。この発明における前記一般式Iで表されるステリルグルコピラノシドは、天然由来物質であってもよく、合成品であってもよい。一般に、ステリルグルコピラノシドは、天然物からの抽出あるいはステロールとD-グルコースを用いる化学合成によって得ることができる。この発明において好ましいコレステリルグルコピラノシドは、合成品を用いてもよい。天然由来物質としては、例えば、鳥類の羽毛から得られたものを、好ましく用いることができる。前記一般式Iで表されるステリルグルコピラノシドは、以下のようにして合成することができる。<ステリルグルコピラノシドの合成法>適当な溶媒中において、各種ステロールとアセトハロゲノ-α-D-グルコピラノースを、シアン化水銀や酸化銀などの触媒の存在下に室温程度の温度で反応させて、テトラアセチルステリル-β-D-グルコピラノシドを得たのち、シリカゲルカラムクロマトグラフィーで精製する。つぎに、この精製テトラアセチルステリル-β-D-グルコピラノシドを、例えば、メタノール-水溶媒中で室温程度の温度で加水分解処理することにより、目的のステリル-β-D-グルコピラノシドが得られる。ステリル-α-D-グルコピラノシドを合成する場合には、上記方法において、原料のアセトハロゲノ-α-D-グルコピラノースの代わりに、アセトハロゲノ-β一D一グルコピラノースを用いればよい。また、例えば、コレステリルグルコピラノシドなどは、鳥類の羽毛より、以下に示す方法により得ることができる。<天然由来のコレステリルグルコピラノシド>鳥類の羽毛を破砕し、適当な抽出溶媒で処理して、まず全脂質を抽出する。ついで、この全脂質から、メタノール-水溶解物を取り出したのち、弱アルカリ処理して、アルカリ処理安定な複合脂質画分を得る。得た複合脂質両分を、ケイ酸カラムクロマトグラフィーや、ケイ酸薄層クロマトグラフィーケイ酸TLCに付し、粗製のコレステリルグルコピラノシドを得たのち、さらにケイ酸TLCに付すことにより、精製コレステリルグルコピラノシドが得られる。この発明の発毛育毛料は、前記一般式Iで表されるステリルグルコピラノシドの含有するものである。その際、濃度が10-13g/mL、10-12g/mLという超希薄濃度においても、発毛育毛効果を発揮するという優れた特長を示すものである。なお、この含有量を多くしても、その量に応じた発毛、育毛効果が発揮されず、むしろ逆に発毛、育毛効果が低下する傾向も認められる。したがって、前記ステリルグルコピラノシドの好ましい含有量は、10-13~10-8g/mL、より好ましい含有量は10-13~10-9g/mLである。この発明の発毛育毛料の剤型は、特に限定されるものではないが、例えば、ヘアトニック、シャンプー、リンス、ポマード、ヘアローション、ヘアクリーム、ヘアトリートメント等の通常、発毛育毛料として用いられているものが挙げられる。これらの発毛青毛料は、一般式Iで表されるステリルグルコピラノシドを配合する以外は、通常の発毛育毛料と同様の方法で調製することができる。また、この発明の発毛育毛料には、通常、発毛育毛料に適用される炭化水素類、ロウ類、油脂類、エステル類、高級脂肪酸、高級アルコール、界面活性剤、香料、色素、防腐剤、抗酸化剤、紫外線防御剤、アルコール類、pH調整剤、及び各種目的に応じた種々の薬効成分などが適宜選択されて調製される。さらに、この発明の発毛育毛成分であるステリルグルコピラノシド以外の発毛、育毛成分、例えば、卵胞ホルモン、抹消血管血流促進剤、局所刺激剤、角質溶解剤、抗脂漏剤、殺菌剤、代謝賦活剤、酸索活性阻害剤、消炎剤、栄養剤、保湿剤等を当該ステリルグルコピラノシドと併せて用いることもできる。以下、この発明にかかる発毛育毛料を実施例に基づいて詳細に説明するが、この発明は、これらの例によってなんら限定されるものではない。<製造例1>トリ羽毛由来のコレステリルグルコピラノシド以下、FCGと略記する。を、以下のようにして得た。1全脂質の抽出破砕されたニワトリ羽350gに、クロロホルムーメタノール容量比2:16Lを加えて2時間振とうした。吸引ろ過後、残渣に、さらにクロロホルムーメタノール容量比2:16Lを加えて2時間振とうした。吸引ろ過後、クロロホルム-メタノール容量比1:26Lを加えて2時間振とうし、脂質を抽出した。得られた全抽出液を濃縮乾固し、クロロホルム-メタノール-水容量比8:4:3で分配したのち、下層を濃縮乾固して、全脂質5.6gを得た。2アルカリ安定な複合脂質画分の調製前記1で得られた全脂質にヘキサン900mL、メタノール1,800mLを加えて撹拌した。その後、水300mLを加えて再撹拌し、下層のメタノール-水層を分取した。上層のヘキサン層に再度メタノール600mLを加えて撹拌し、その後、水150mL加えて撹拌したのち、下層を分取した。メタノール-水層を合わせて濃縮乾固したのち、弱アルカリ処理0.4モル/Lメタノール性KOH溶液で温度37°Cにて2時間分解した。3ケイ酸カラムクロマトグラフィーおよびケイ酸薄層クロマトグラフィーによるFCGの単離前記2で得られたアルカリ処理安定な複合脂質画分を、クロロホルムーアセトン容量比7:3可溶部と不溶部に分けたのち、それぞれケイ酸カラムクロマトグラフィーに供した。可溶部は、クロロホルム-アセトン容量比7:3500mL、クロロホルム-アセトン容量比1:1500mL画分1、アセトン500mL画分2およびクロロホルム-メタノール容量比2:1500mLで溶出した。不溶部は、クロロホルム-アセトン容量比1:1650mL画分3、アセトン300mL画分4、およびクロロホルム-メタノール容量比2:1300mLで溶出した。それぞれの画分を、クロロホルム-メタノール-水容量比65:16:2を展開溶媒とするケイ酸TLCケイ酸薄層クロマトグラフィーに供し、コレスデリルグルコピラノシドCGのスポッ卜を確認した。画分1および画分2と画分4を合わせたものを、クロロホルム-メタノール容量比95:12を展開溶媒としたケイ酸TLCに供し、CGのスポットを分取した。それぞれ26.7mgと、12.7mgの粗製CGが得られた。画分3は、さらにケイ酸カラムクロマトグラフィーに供し、クロロホルム-アセトン容量比7:3500mL、クロロホルムーアセトン容量比1:1500mL画分5およびアセトン500mLで溶出した。画分5からは、粗製CGが12.0mg得られた。前記の粗製CGを合わせて、クロロホルム-メタノール容量比95:12を展開溶媒としたケイ酸TLCに供し、CGのスポットを分取し、CG精製物FCG40mgを得た。<製造例2>合成コレステリルグルコピラノシド以下、SCGと略記する。を、以下のようにして得た。なお、アセトブロモグルコース、コレステロール、酸化銀、シアン化水銀、30質量アンモニア水は、和光純薬社製の特級を用いた。1シアン化水銀を用いたテトラアセチルコレステリル-β-D-グルコピラノシドの合成50mLナスフラスコ内でCH3CN5mLにコレステロール193mgと、アセトブロモ-α-D-グルコピラノース1.238gを加え、撹拌した。ここに、HgCN2411mgを加え、室温で3時間撹拌し、TLCでアセトブロモ-α-D-グルコピラノースの消失を確認した。これに、CH2Cl210mLを加え、吸引ろ過した。得たろ液を、飽和NaHCO3水、水で分液し、MgSO4を加え一晩放置した後、吸引ろ過し、濃縮した。これをSiO2カラムWakogelC-200、展開溶媒ヘキサン:酢エチ容量比=19:1200mL,9:1100mL,4:1100mL,1:1100mLで分画し、テトラアセチルコレステリル-β-D-グルコピラノシド252mg収率70.4を得た。2酸化銀を用いたテトラアセチルコレステリル-β-D-グルコピラノシドの合成500mLナスフラスコ内でCH2Cl2200mLに、コレステロール15.09gとアセトブロモ-α-D-グルコピラノース30.65gを加え、撹拌した。ここに、Ag2O21.00gを加え、室温で3時間撹拌し、さらに、アセトブロモ-α-D-グルコピラノース30.65g、Ag2O21.00gを加えた。10時間後、さらに、アセトブロモ-α-D-グルコピラノース30.65g、Ag2O21.00gを加えた。これを12時間撹拌し、TLCでアセトブロモ-α-D-グルコピラノースの消失を確認してから、吸引ろ過した。得たろ液を濃縮し、これをSiO2カラムWakogelC-200、展開溶媒ヘキサン:酢エチ容量比=19:1500mL,9:1500mL,4:1100mL,1:1500mLで分画した。さらに、同じ条件でSiO2カラムを繰り返し、TLCでワンスポットのテトラアセチルコレステリル-β-D-グルコピラノシド15.62g収率55.8を得た。3テトラアセチルコレステリル-β-D-グルコピラノシドの加水分解によるコレステリル-β-D-グルコピラノシドヘの変換a前記1で得られた、テトラアセチルコレステリル-β-D-グルコピラノシド100.2mgをメタノール50mLに溶解した。さらに、30質量アンモニア水10mLを加えた。これを室温で12時間撹拌し、TLCで原料の消失を確認した。この溶液を濃縮し、コレステリル-β-D-グルコピラノシド68.2mg収率88.9を得た。b前記2で得られた、テトラアセチルコレステリル-β-D-グルコピラノシド15.41gをメタノール300mLに溶解した。さらに、30質量アンモニア水50mLを加えた。これを室温で12時間撹拌し、TLCで原料の消失を確認した。この溶液を濃縮し、コレステリル-β-D-グルコピラノシド11.31g収率95.9を得た。これをエタノール-水で再結晶し、白色の粉末4.58gを得た。さらに、母液を再度結晶化させ、薄茶色の粉末2.7gを得た。なお、活性試験用には、この方法で合成されたコレステリル-β-D-グルコピラノシドを用いた。<分析結果>イテトラアセチルコレステリル-β-D-グルコピラノシドの構造確認前記1および2で得られたテトラアセチルコレステリル-β-D-グルコビラノシドの1H-NMRは、いずれも文献値と良い一致を示した。また、ジアステレオ異性体のテトラアセチルコレステリル-α-D-グルコピラノシドの生成も、認められなかった。ロコレステリル-β-D-グルコピラノシドの構造確認前記3bで得られたコレステリル-β-D-グルコピラノシドの1H-NMRを図1に示す。このコレステリル-β-D-グルコピラノシドは、文献値と良い一致を示した。加水分解反応は定量的に反応が進んでいた。ハコレステリル-β-D-グルコビラノシドの純度前記3bで得られたコレステリル-β-D-グルコピラノシドのTLCクロマトグラムを図2に、HPLCクロマトグラムを図3に示す。これらから、白色粉末、薄茶色の粉末のいずれも、ワンスポット、ワンピークを与えることが分かる。<製造例3>トウモロコシ由来のステリルグルコピラソシド以下、CSGと略記する。を、以下のようにして得た。トウモロコシ種実スイートコーン種100g生質量を、温度100°Cの水蒸気で3分間加熱して酵素を失活した後、ポリトロン型ホモジナイザーを用いて、5倍容のクロロホルム:メタノール2:1,v/vでホモジナイズし、吸引ろ過した。この残渣について、同様の処理をクロロホルム:メタノール2:1,v/vおよびクロロホルム:メタノール1:2,v/vで1回ずつ行い、それぞれの抽出液を回収した。この抽出液を濃縮後、混在する水溶性成分を水洗除去し、下層のクロロホルム層を減圧濃縮して、総脂質とした。総脂質は約1.7g回収された。つぎに、総脂質をクロロホルム-アセトン-メタノール系のケイ酸カラムクロマトグラフィーに供し、中性脂質、糖脂質およびリン脂質に分画した。この糖脂質画分を、クロロホルム-アセトン系のケイ酸カラムクロマトグラフィーに供し、粗分画した後、展開溶媒にクロロホルム-メタノール-水65:16:2,v/vを用いた分取ケイ酸TLCを用いて、ステリルグルコピラノシドCSGを精製した。収量は、トウモロコシ100g生質量当たり3.4mgであった。<製造例4>コメ由来のステリルグルコピラノシド以下、RSGと略記する。を、以下のようにして得た。製造例3と同様にして、コメ糠から総脂質を抽出した。総脂質の収量は、コメ糠100g当たり10.9gであった。つぎに、製造例3と同様にして、総脂質からステリルグルコピラノシドRSGを分離精製した。収量は、コメ糠100g生質量当たり26.7mgであった。<参考例1;マウスによる発毛の予備実験>製造例1で得たFCG10pg/mL濃度の70質量エタノール水溶液試料液を調製した。9週齢ICR雄マウス4匹の剃毛背側皮膚に、前記試料液20μLを塗布し、3時間後と6時間後に皮膚を採取した。この皮膚に対し、bFGF塩基性線維芽細胞増殖因子、Hsp70熱ショック蛋白70及びVEGF血管内皮細胞増殖因子の蛍光抗体法による免疫染色とHE染色ヘマトキシリンーエオシン染色を行い、14μm厚クリオスッタト切片の標本を作製した。この標本を、顕微鏡と写真撮影装置[CarlZeiss,Jena社製、AxioCamMRc5装着Axioskop]で観察した。1塗布3時間後<HE染色>2匹中、1匹のマウスに、局所的な毛根の伸長と毛球の肥大が認められた。成長期の毛根;毛根が伸びた毛母基はかなり肥大しており、帽状に毛乳頭と接触していた。一部の肥大した毛母基は、毛乳頭を完全に取り込んでいた。さらに、毛包外根鞘と、それに続く表皮に局所的な重層化とバルジの肥大が観察された。<bFGF免疫染色>表皮近傍の重層化毛包とそれに続く重層化表皮、肥大化バルジ部、毛母基最外層の外根鞘、立毛筋などにbFGFの強い発現が見られた。特に、毛乳頭と接触した毛母基接触面の外根鞘に、bFGFの強い発現が惹起されていた。<VEGF免疫染色>エタノール対照マウス:上皮と若干肥大したバルジ部の細胞が、VEGFに陽性であった。FCG塗布マウス:毛母基内の毛乳頭細胞と、毛母基最外層に局在する、おそらく線維芽細胞にVEGF陽性反応がみられた。表皮と休止期毛根の毛乳頭細胞に、VEGFの発現が観察された。<Hsp70免疫染色>休止期毛根の毛乳頭細胞に、弱あるいは中等度のHsp70の発現が見られた。また、立毛筋と線維芽細胞に弱陽性反応が認められたが、バルジ部は陰性であった。2塗布6時間後<HE染色>殆どの毛根が皮下組織にまで達しており、その内一部の毛根はJ字状に湾曲していた。<bFGF免疫染色>毛乳頭が毛母基に完全に包み込まれた毛球が観察されたが、毛乳頭細胞のbFGFの発現は微弱になっていた。毛母基に毛乳頭細胞が接触して、毛母基に取り込みが始まる時期に、一過性にbFGFの強い発現が惹起されるようである。立毛筋のbFGF発現は、中等度に減弱していた。以上の結果、下記のことが考えられる。FCGを塗布すると、表皮、外根鞘、バルジ、毛母基などにbFGFの発現が誘発され、これらの組織に細胞分裂が惹起される。正常マウスの表皮は2列立方上皮であるが、表皮とそれに続く外根鞘は重層化し、おそらく、この重層化は毛根の伸長に働き、毛乳頭との接触に関与すると考えられる。バルジ、毛母基などは、細胞分裂によって肥大化とbFGFの発現がさらに増強する。休止期毛根では毛母基の形態を呈していないが、分裂増殖に伴い成長期の毛母基の形成が惹起される。毛乳頭は、分化途上の毛母基との接触によって分裂増殖肥大し、さらにbFGFの強い発現がおきる。毛母基の形成に伴って、毛乳頭の取り込みが始まる。毛乳頭は毛母基に完全に取り込まれると、毛根の形成が完了する。毛球の毛乳頭ではbFGFの発現が微弱となり、これに代わってVEGFの発現が誘導される。このVEGF発現は毛球内に微小血管を誘導することが示唆され、成長期毛根の分化が完了する。<実施例1~4>1試料液の調製製造例1で得たFCG、製造例2で得たSCG、製造例3で得たCSGおよび製造例4で得たRSGを、それぞれ70質量エタノール水に溶解し、FCG1pg/mL溶液FCG10pg/mL溶液FCG100pg/mL溶液SCG1pg/mL溶液SCG10pg/mL溶液SCG100pg/mL溶液CSG1pg/mL溶液CSG10pg/mL溶液RSG1pg/mL溶液およびRSG10pg/mL溶液を調製した。また、市販のコレステロール以下、Choと略記する。を70質量エタノール水に溶解し、Cho10pg/mL溶液を調製した。2発毛試験8~9週齢C3H雄マウスの背側体毛を、動物用電気バリカン大東電気工業社製ThriveclipperModel600ADと、回転式セェーバナショナルES611を併用して剃毛した。前記の各試料液20μLを、それぞれ4回に分けて風乾を繰り返しながら、マウス剃毛中央部の皮膚に塗布した。塗布は剃毛後、24時間経過してから実施した。発毛効果は、試料液塗布2週間後に、肉眼観察とデジタルカメラ撮影写真によって評価した。なお、対照として70質量エタノール水の塗布および試料液無塗布剃毛マウスを用いた。結果を表1に示す。表1から、以下のことが分かる。合成コレステリルグルコピラノシドSCGにも、羽毛由来のコレステリルグルコピラノシドFCGと同一の発毛作用が認められる。また、植物由来のステリルグルコピラノシドCSG,RSGおよびコレステロールChoも弱いながら発毛作用が認められる。また、FCGおよびSCGは、マウスに対しては、濃度が10pg/mLよりも1pg/mLの方が、発毛作用が強い。<実施例5>FCGの46歳女性の、頭髪に対する発毛効果を調べた。充分に洗髪し、ドライヤーで完全に乾燥させたのち、FCG10pg/mL濃度の70質量エタノール水溶液試料液約3.5mLを、頭皮に満遍なく塗布する操作を1日1回行った。試料液を使用前、使用開始日から約2ヶ月経過後に、それぞれデジタルカメラで、前額部からと頭頂部から写真撮影した。その結果を図4に示す。図4から分かるように、使用開始日から約2ヶ月経過後に、前額部および頭頂部のいずれも多量の発毛が認められた。<実施例6>FCGの35歳男性の、頭髪に対する発毛効果を調べた。充分に洗髪し、完全に自然乾燥させたのち、FCG10pg/mL濃度の70質量エタノール水溶液試料液約3.5mLを、頭皮に満遍なく塗布する操作を1日1回行った。試料液の使用開始日および約2ヶ月経過後に、それぞれデジタルカメラで、後頭部の写真撮影を行った。その結果を図5に示す。2ヶ月経過後に、後頭部及び頭頂部にかなりの発毛が認められた。なお、1年以上経過した時点で、副作用は全く認められていない。"