"サンショウの果皮又は果実の揮発成分をイオン交換樹脂又はゲル濾過材に吸着させた吸着物からなることを特徴とするアルコール発酵促進剤。サンショウの果皮又は果実とイオン交換樹脂又はゲル濾過材を、1:1~1:0.001の重量比で容器内に収納し、所定時間接触させることにより、サンショウの果皮又は果実の揮発成分をイオン交換樹脂又はゲル濾過材に吸着させた請求項1記載のアルコール発酵促進剤。サンショウの果皮又は果実として、サンショウの果皮又は果実の粉砕物を使用する請求項1又は2記載のアルコール発酵促進剤。サンショウの果皮又は果実とイオン交換樹脂又はゲル濾過材を、室温の容器内で3時間~30日間接触させる請求項1,2又は3記載のアルコール発酵促進剤。イオン交換樹脂として、陽イオン交換樹脂を使用する請求項1,2,3又は4記載のアルコール発酵促進剤。アルコール発酵原料に、請求項1~請求項5のいずれかに記載のアルコール発酵促進剤を添加して発酵させるアルコール発酵方法であって、アルコール発酵促進剤をアルコール発酵原料の初発モロミ容量当り、0.04w/v~2w/v添加することを特徴とするアルコール発酵方法。アルコール発酵原料に、請求項1~請求項5のいずれかに記載のアルコール発酵促進剤を添加することにより、アルコール発酵微生物の発酵能を増強させてアルコール発酵を行うことを特徴とするアルコール発酵方法。アルコール発酵微生物として、酵母又はザイモモナス属細菌を使用する請求項7記載のアルコール発酵方法。請求項6~請求項8に記載されたいずれかの方法で発酵させたことを特徴とするアルコール。発酵速度を向上させることができれば、直接的に発酵所要時間を短縮することができるため、設備利用効率や労働生産性が向上し、コストダウンを図ることができるとともに、雑菌汚染の危険性を低下させることができる。しかしながら、従来開発が進められている固定化微生物によるバイオリアクターは、発酵装置などの多大な変更が必要であること、培地である原料中に固形分を含むとリアクターが閉塞する可能性が高いこと、雑菌汚染による被害が甚大になる可能性が高いこと、更に、酒類製造に供する場合には、酒質が変動する等の欠点があるため殆んど実用化されていないのが実情である。これに対して、本発明者らの提供した特許文献1~4によれば、ショウガ等の農作物を発酵原料に添加することによって、酵母による発酵を促進することができ、しかも発酵装置などの大幅な変更を必要としないという利点を有している。本発明者らは農作物による発酵能の促進に関する研究を発展させ、発酵促進現象に関与すると考えられる農作物の中でも、サンショウの果実及び果皮中の発酵促進作用に注目した。本発明は、前記発酵促進作用を、より有効に利用することによって酵母などの既存のアルコール発酵微生物の発酵能を増強させて、設備装置などの特段の変更を必要としない簡便な方法で発酵速度を向上させる省資源省エネルギーで効率的なアルコール発酵促進剤及びアルコール発酵方法並びにアルコールを提供することを目的としている。本発明者らは、サンショウの果実及び果皮による発酵能の促進に関する研究を発展させ、サンショウの発酵促進作用には果実及び果皮中の揮発成分も関与しているとの知見を得た。この知見に基づき、本発明は上記課題を解決するために、サンショウの果皮又は果実の揮発成分をイオン交換樹脂又はゲル濾過材に吸着させた吸着物からなるアルコール発酵促進剤を基本として提供する。また、サンショウの果皮又は果実とイオン交換樹脂又はゲル濾過材を、1:1~1:0.001の重量比で容器内に収納し、所定時間接触させることにより、サンショウの果皮又は果実の揮発成分をイオン交換樹脂又はゲル濾過材に吸着させた構成を提供する。更に、サンショウの果皮又は果実として、サンショウの果皮又は果実の粉砕物を使用する構成、サンショウの果皮又は果実とイオン交換樹脂又はゲル濾過材を、室温の容器内で3時間~30日間接触させる構成、イオン交換樹脂として、陽イオン交換樹脂を使用する構成を提供する。また、アルコール発酵原料に、前記構成のアルコール発酵促進剤を添加して発酵させるアルコール発酵方法であって、アルコール発酵促進剤をアルコール発酵原料の初発モロミ容量当り、0.04w/v~2w/v添加するアルコール発酵方法、及び上記構成のアルコール発酵促進剤を添加することにより、アルコール発酵微生物の発酵能を増強させてアルコール発酵を行うアルコール発酵方法を提供する。アルコール発酵微生物として、酵母又はザイモモナス属細菌を使用する。そして、上記したアルコール発酵方法で発酵させたアルコールを提供する。以上記載した本発明によれば、サンショウの果皮又は果実の揮発成分とイオン交換樹脂又はゲル濾過材を接触させるだけで、サンショウの果皮又は果実に由来する発酵促進作用を有する揮発成分を吸着させた吸着物からなるアルコール発酵促進剤を得ることができる。そして、アルコール発酵原料に、所定量のサンショウの果皮又は果実の揮発成分をイオン交換樹脂又はゲル濾過材に吸着させた吸着物からなるアルコール発酵促進剤を添加してアルコール発酵を行うことにより、酵母などのアルコール発酵微生物の発酵能が増強されて活性が高まり、発酵速度を向上させることができる。そのため、発酵期間を短縮させることができ、設備利用効率や労働生産性が向上し、コストダウンを図ることができるとともに、量産規模でのアルコール発酵工程において最も重要な命題の一つである発酵の安定化を実現できる。そして、量産規模のアルコール発酵工程において使用されている酵母及びザイモモナス属細菌のアルコール発酵微生物をそのまま使用できる。また、固定化微生物によるバイオリアクターの場合と異なり、特別な設備投資の必要性がないというメリットがあるとともに、設備利用の効率向上や地球温暖化対策として重要な炭酸ガスの削減にも寄与し得る。よって、本発明は省資源省エネルギー化やコストダウンの必要性が叫ばれている燃料用アルコールの発酵に適用して特に有用である。また、本発明で使用される微生物の発酵能力増強作用のあるサンショウは、食品素材などとしても用いられている農産物であること、基材であるイオン交換樹脂又はゲル濾過材も食品加工に利用されていることから、本発明によって得られたアルコールは、燃料用としてはもちろん飲料用としても利用可能である。以下、本発明にかかるアルコール発酵促進剤及びアルコール発酵方法並びにアルコールの実施形態を説明する。本発明の対象とするアルコール発酵促進剤及びアルコール発酵方法は、燃料用,食用,工業用その他の用途を問わず、アルコール発酵微生物として酵母又はザイモモナス属細菌を用いてアルコールを醸造する方法を対象とし、特には燃料用及び食用のエタノールを醸造する方法を対象としている。本発明にかかるアルコール発酵促進剤は、サンショウの果皮又は果実の揮発成分をイオン交換樹脂又はゲル濾過材に吸着させた吸着物からなる。よって、発酵促進機能を有する成分として、食用のサンショウ山椒、学名:Zanthoxylumpiperitumの果実又は果皮に由来する揮発成分を用いること、及びこの揮発成分を取り込む基材として、イオン交換機能もしくは微細な孔径による分子篩機能によって食品加工や用水などの分離精製工程で使用されているイオン交換樹脂ionexchangeresin又はゲル濾過材を用い、前記した揮発成分を吸着させることに特徴を有する。サンショウは果実、果皮のいずれでもよく、未粉砕のものでも使用可能であるが、成分を揮発し易くさせるという観点から、粉砕したものを用いることが望ましい。また、サンショウの果実又は果皮の粉砕物は、そのままの状態で使用すればよく、抽出や加熱処理などの特別な処理をする必要性はない。サンショウの果皮又は果実の揮発成分を吸着させる基材として使用するイオン交換樹脂は、合成樹脂の一種で分子構造の一部にイオン基として電離する構造を持つ。イオン交換樹脂には陽イオン交換樹脂、陰イオン交換樹脂など種々のものがあるが、本発明には陽イオン交換樹脂が適しており、具体的にはオルガノ株式会社から販売されているアクリル系の弱酸性陽イオン交換樹脂商品名:IRC76を挙げることができる。また、ゲル濾過材にも種々のものがあり、特に限定はないが、本発明に適する具体例としてGEヘルスケアジャパン株式会社から販売されているゲル濾過材商品名:SephadexG50が挙げられる。そして、サンショウの果皮又は果実の粉砕物とイオン交換樹脂又はゲル濾過材を、1:1~1:0.001の重量比で所定の容器内に収納し、所定時間接触させることにより、サンショウの果皮又は果実の揮発成分をイオン交換樹脂又はゲル濾過材に接触させて吸着させる。接触時において容器は開放状態又は密閉状態のどちらの状態であってもよいが、接触効率を高めるためには密閉状態に保持しておく方がより好ましい。接触手段は特に制限はなく、放置による自然拡散接触、通風による強制接触のいずれでもよい。接触させる温度は室温でよく、接触時間は3時間~30日間の任意の時間を設定すればよい。このような操作によってサンショウの果皮又は果実から揮発した成分がイオン交換樹脂又はゲル濾過材と接触して吸着され、吸着物を得ることができる。この吸着物をアルコール発酵促進剤として使用する。アルコール発酵促進剤は、そのままの状態でアルコール発酵原料に添加すればよく、抽出や加熱処理などの特別な処理をする必要性はない。アルコール発酵原料としては、特に制約はなく、既存のアルコール発酵の原料となるものはそのまま全て使用することができる。アルコール発酵促進剤の添加量は、アルコール発酵原料の初発のモロミ容量に対して、風乾物重量として、0.04w/v~2w/vの範囲で設定する。得られたアルコール発酵促進剤をアルコール発酵開始前の状態のアルコール発酵原料に添加し、アルコール発酵微生物の最適発酵温度である28°C~32°Cの温度領域の発酵温度でアルコール発酵を行う。発酵温度は、発酵上限温度を28°C~32°Cにコントロールすればよいが、発酵の全期間を28°C~32°Cの温度領域にコントロールするようにしてもよい。これにより、アルコール発酵微生物の発酵能を増強させることができ、アルコール発酵微生物の最適発酵温度である28°C~32°Cの温度領域において、アルコール発酵微生物の活性が向上し、発酵速度を向上させることができる。アルコール発酵微生物としては、現在、工業規模で使用されている酵母やザイモモナス属細菌などのアルコール発酵微生物をそのまま使用できる。得られたアルコールはアルコール発酵原料に応じて、アルコール燃料やアルコール飲料として使用することができ、特にはアルコール燃料として適している。また、添加した発酵促進剤の量によってはサンショウの有する独特の風味や生理活性成分が付与されたアルコール飲料を得ることができる。以下に本発明にかかるアルコール発酵促進剤及びアルコール発酵方法並びにアルコールの実施例及び従来例を説明する。なお、本発明はこれら実施例の記載内容に限定されるものではない。1.5Lの容器の下段にサンショウの果皮の粉砕物を、上段に基材であるイオン交換樹脂IRC76オルガノ株式会社製を、重量比で1:1となるように置き、室温に30日間放置した。これによってサンショウの揮発成分を吸着したイオン交換樹脂IRC76を基材とする吸着物からなるアルコール発酵促進剤を得た。得られたアルコール発酵促進剤を、酵母エキス1、ペプトン2及びグルコース13からなる培地以下、YPD培地というに、風乾物重量で初発モロミ容量当り0.04w/v、1w/v添加し、さらに酵母を初発菌数が2.6×106cells/mlとなるように加えて28°Cでアルコール発酵させた実施例1-1~2。[従来例1]アルコール発酵促進剤を添加しなかった以外は、実施例1-1~2と同一の原料を同一条件でアルコール発酵させた従来例1。実施例1-1~2と従来例1の発酵開始後24時間時点と48時間時点の炭酸ガス発生量及び96時間時点の生成アルコール濃度を表1に示すとともに、図1に炭酸ガス発生量と発酵時間の関係をグラフで示す。表1及び図1から明らかなように、アルコール発酵促進剤を添加すると、添加量によって発酵の促進される程度は異なるものの、実施例1-1~2のいずれの添加量の場合も発酵は促進された。例えば発酵開始後24時間時点の炭酸ガス発生量を見てみると、アルコール発酵促進剤を0.04w/v添加した実施例1-1は11.7g、1w/v添加した実施例1-2は14.4gであり、いずれもアルコール発酵促進剤を添加していない従来例1の1.9gを上回る炭酸ガスが発生している。また、発酵開始後96時間時点の生成アルコール濃度も、実施例1-1~2はいずれも7.5v/vであって、従来例1の5.6v/vを上回っている。よって、アルコール発酵促進剤の添加によって、酵母の発酵能が増強されている。1.5Lの容器の下段にサンショウの果実の粉砕物を、上段に基材であるイオン交換樹脂IRC76オルガノ株式会社製を重量比で1:1となるように置き、室温に24時間放置した。これによってサンショウの揮発成分を吸着したイオン交換樹脂IRC76を基材とする吸着物からなるアルコール発酵促進剤を得た。得られたアルコール発酵促進剤を、YPD培地に、風乾物重量で初発モロミ容量当り0.04w/v、1w/v添加し、さらに酵母を初発菌数が2.2×106cells/mlとなるように加えて28°Cでアルコール発酵させた実施例2-1~2。[従来例2]アルコール発酵促進剤を添加しなかった以外は、実施例2-1~2と同一の原料を同一条件でアルコール発酵させた従来例2。実施例2-1~2と従来例2の発酵開始後24時間時点と48時間時点の炭酸ガス発生量及び96時間時点の生成アルコール濃度を表2に示すとともに、図2に炭酸ガス発生量と発酵時間の関係をグラフで示す。表2及び図2から明らかなように、アルコール発酵促進剤を添加することによって発酵は促進された。例えば、発酵開始後24時間時点の炭酸ガス発生量を見てみると、アルコール発酵促進剤を0.04w/v添加した実施例2-1は7.8g、1w/v添加した実施例2-2は12.2gであり、いずれもアルコール発酵促進剤を添加していない従来例2の1.6gを上回る炭酸ガスが発生している。発酵開始後96時間時点の生成アルコール濃度も、実施例2-1~2はともに7.4v/vであり、従来例2の5.3v/vを上回っている。よって、アルコール発酵促進剤の添加によって、酵母の発酵能が増強されている。1.5Lの容器の下段にサンショウの果皮の粉砕物を、上段に基材であるイオン交換樹脂IRC76オルガノ株式会社製を重量比で1:1となるように置き、室温に3時間放置することによってサンショウの揮発成分を吸着したイオン交換樹脂IRC76を基材とする吸着物からなるアルコール発酵促進剤を得た。得られたアルコール発酵促進剤を、YPD培地に、風乾物重量で初発モロミ容量当り2w/v添加し、さらに酵母を初発菌数が2.2×106cells/mlとなるように加えて28°Cでアルコール発酵させた実施例3。[従来例3]アルコール発酵促進剤を添加しなかった以外は、実施例3と同一の原料を同一条件でアルコール発酵させた従来例3。実施例3と従来例3の発酵開始後24時間時点と48時間時点の炭酸ガス発生量及び96時間時点の生成アルコール濃度を表3に示すとともに、図3に炭酸ガス発生量と発酵時間の関係をグラフで示す。表3及び図3から明らかなように、アルコール発酵促進剤を添加することによって発酵は促進された。例えば発酵開始後24時間時点の炭酸ガス発生量を見てみると、アルコール発酵促進剤を2w/v添加した実施例3は12.8gであり、アルコール発酵促進剤を添加していない従来例3の1.8gを上回る炭酸ガスが発生している。また、発酵開始後96時間時点の生成アルコール濃度も、実施例3は、7.4v/vであって、従来例3の5.4v/vを上回っている。よって、発酵促進剤の添加によって、酵母の発酵能が増強されている。1.5Lの容器の下段にサンショウの果実の粉砕物を、上段に基材であるイオン交換樹脂IRC76オルガノ株式会社製を重量比で1:0.1となるように置き、室温に30日間放置することによってサンショウの揮発成分を吸着したイオン交換樹脂IRC76を基材とする吸着物からなるアルコール発酵促進剤を得た。得られたアルコール発酵促進剤を、YPD培地に、風乾物重量で初発モロミ容量当り2w/v添加し、さらに酵母を初発菌数が2.6×106cells/mlとなるように加えて28°Cでアルコール発酵させた実施例4。[従来例4]アルコール発酵促進剤を添加しなかった以外は、実施例4と同一の原料を同一条件でアルコール発酵させた従来例4。実施例4と従来例4の発酵開始後24時間時点と48時間時点の炭酸ガス発生量及び96時間時点の生成アルコール濃度を表4に示すとともに、図4に炭酸ガス発生量と発酵時間の関係をグラフで示す。表4及び図4から明らかなように、アルコール発酵促進剤を添加することによって発酵は促進された。例えば、発酵開始後24時間時点の炭酸ガス発生量を見てみると、アルコール発酵促進剤を2w/v添加した実施例4は14.4gであり、アルコール発酵促進剤を添加していない従来例4の1.9gを上回る炭酸ガスが発生している。発酵開始後96時間時点の生成アルコール濃度も、実施例4は7.5v/vであり、従来例4の5.6v/vを上回っている。よって、アルコール発酵促進剤の添加によって、酵母の発酵能が増強されている。1.5Lの容器の下段にサンショウの果皮の粉砕物を、上段に基材であるイオン交換樹脂IRC76オルガノ株式会社製を重量比で1:0.01となるように置き、室温に24時間放置することによってサンショウの揮発成分を吸着したイオン交換樹脂IRC76を基材とする吸着物からなるアルコール発酵促進剤を得た。得られたアルコール発酵促進剤を、YPD培地に、風乾物重量で初発モロミ容量当り0.04w/v添加し、さらに酵母を初発菌数が2.6×106cells/mlとなるように加えて28°Cでアルコール発酵させた実施例5。[従来例5]アルコール発酵促進剤を添加しなかった以外は、実施例5と同一の原料を同一条件でアルコール発酵させた従来例5。実施例5と従来例5の発酵開始後24時間時点と48時間時点の炭酸ガス発生量及び96時間時点の生成アルコール濃度を表5に示すとともに、図5に炭酸ガス発生量と発酵時間の関係をグラフで示す。表5及び図5から明らかなように、アルコール発酵促進剤を添加することによって発酵は促進された。例えば発酵開始後24時間時点の炭酸ガス発生量を見てみると、アルコール発酵促進剤を0.04w/v添加した実施例5は7.9gであり、アルコール発酵促進剤を添加していない従来例5の1.9gを上回る炭酸ガスが発生している。また、発酵開始後96時間時点の生成アルコール濃度も、実施例5は7.2v/vであって、従来例5の5.5v/vを上回っている。よって、発酵促進剤の添加によって、酵母の発酵能が増強されている。1.5Lの容器の下段にサンショウの果皮の粉砕物を、上段に基材であるイオン交換樹脂IRC76オルガノ株式会社製を重量比で1:0.001となるように置き、室温に24時間放置することによってサンショウの揮発成分を吸着したイオン交換樹脂IRC76を基材とする吸着物からなるアルコール発酵促進剤を得た。得られたアルコール発酵促進剤を、YPD培地に、風乾物重量で初発モロミ容量当り0.04w/v添加し、さらに酵母を初発菌数が2.6×106cells/mlとなるように加えて28°Cでアルコール発酵させた実施例6。[従来例6]アルコール発酵促進剤を添加しなかった以外は、実施例6と同一の原料を同一条件でアルコール発酵させた従来例6。実施例6と従来例6の発酵開始後24時間時点と48時間時点の炭酸ガス発生量及び96時間時点の生成アルコール濃度を表6に示すとともに、図6に炭酸ガス発生量と発酵時間の関係をグラフで示す。表6及び図6から明らかなように、アルコール発酵促進剤を添加することによって発酵は促進された。例えば発酵開始後24時間時点の炭酸ガス発生量を見てみると、アルコール発酵促進剤を0.04w/v添加した実施例6は7.9gであり、アルコール発酵促進剤を添加していない従来例6の1.9gを上回る炭酸ガスが発生している。また、発酵開始後96時間時点の生成アルコール濃度も、実施例6は7.3v/vであって、従来例6の5.7v/vを上回っている。よって、発酵促進剤の添加によって、酵母の発酵能が増強されている。1.5Lの容器の下段にサンショウの果皮の粉砕物を、上段に基材であるイオン交換樹脂IRC76オルガノ株式会社製を重量比で1:1となるように置き、室温に24時間放置することによってサンショウの揮発成分を吸着したイオン交換樹脂IRC76を基材とする吸着物からなるアルコール発酵促進剤を得た。得られたアルコール発酵促進剤を、酵母エキス1、KH2PO40.2、及びグルコース13からなる培地以下、RM培地というに、風乾物重量で初発モロミ容量当り1w/v添加し、更にザイモモナス属細菌Zymomonasmobilisを初発菌数が6.7×107cells/mlとなるように加えて28°Cでアルコール発酵させた実施例7。[従来例7]アルコール発酵促進剤を添加しなかった以外は、実施例7と同一の原料を同一条件でアルコール発酵させた従来例7。実施例7と従来例7の発酵開始後24時間時点と36時間時点の炭酸ガス発生量及び72時間時点の生成アルコール濃度を表7に示すとともに、図7に炭酸ガス発生量と発酵時間の関係をグラフで示す。表7及び図7から明らかなように、アルコール発酵促進剤を添加することによって発酵は促進された。例えば発酵開始後24時間時点の炭酸ガス発生量を見てみると、アルコール発酵促進剤を1w/v添加した実施例7は9.6gであり、従来例7の2.9gを上回る炭酸ガスが発生している。また、発酵開始後36時間時点では、従来例7の炭酸ガス発生量が11.2gであるのに対して、実施例7は15.4gと従来例7を上回っている。よって、アルコール発酵促進剤の添加によって、ザイモモナス属細菌の発酵能が増強されている。1.5Lの容器の下段にサンショウの果皮の粉砕物を、上段に基材であるゲル濾過材SephadexG50coarseGEヘルスケアジャパン株式会社製を重量比で1:1となるように置き、室温に30日間放置することによってサンショウの揮発成分を吸着したゲル濾過材を基材とする吸着物からなるアルコール発酵促進剤を得た。得られたアルコール発酵促進剤を、YPD培地に、風乾物重量で初発モロミ容量当り0.4w/v添加し、さらに酵母を初発菌数が2.7×106cells/mlとなるように加えて28°Cでアルコール発酵させた実施例8。[従来例8]アルコール発酵促進剤を添加しなかった以外は、実施例8と同一の原料を同一条件でアルコール発酵させた従来例8。実施例8と従来例8の発酵開始後24時間時点と48時間時点の炭酸ガス発生量及び96時間時点の生成アルコール濃度を表8に示すとともに、図8に炭酸ガス発生量と発酵時間の関係をグラフで示す。表8及び図8から明らかなように、アルコール発酵促進剤を添加することによって発酵は促進された。例えば発酵開始後24時間時点の炭酸ガス発生量を見てみると、アルコール発酵促進剤を0.4w/v添加した実施例8は9.0gであり、アルコール発酵促進剤を添加していない従来例8の2.0gを上回る炭酸ガスが発生している。また、発酵開始後96時間時点の生成アルコール濃度も、実施例8は7.4v/vであって、従来例8の5.5v/vを上回っている。よって、発酵促進剤の添加によって、酵母の発酵能が増強されている。1.5Lの容器の下段にサンショウの果実の粉砕物を、上段に基材であるゲル濾過材SephadexG50fineGEヘルスケアジャパン株式会社製を重量比で1:0.1となるように置き、室温に24時間放置することによってサンショウの揮発成分を吸着したゲル濾過材を基材とする吸着物からなるアルコール発酵促進剤を得た。得られたアルコール発酵促進剤を、YPD培地に、風乾物重量で初発モロミ容量当り0.4w/v添加し、さらに酵母を初発菌数が2.7×106cells/mlとなるように加えて28°Cでアルコール発酵させた実施例9。[従来例9]アルコール発酵促進剤を添加しなかった以外は、実施例9と同一の原料を同一条件でアルコール発酵させた従来例9。実施例9と従来例9の発酵開始後24時間時点と48時間時点の炭酸ガス発生量及び96時間時点の生成アルコール濃度を表9に示すとともに、図9に炭酸ガス発生量と発酵時間の関係をグラフで示す。表9及び図9から明らかなように、アルコール発酵促進剤を添加することによって発酵は促進された。例えば発酵開始後24時間時点の炭酸ガス発生量を見てみると、アルコール発酵促進剤を0.4w/v添加した実施例9は4.6gであり、アルコール発酵促進剤を添加していない従来例9の1.9gを上回る炭酸ガスが発生している。また、発酵開始後48時間時点の炭酸ガス発生量も、実施例9は10.3gであって、従来例9の6.1gを上回っている。よって、アルコール発酵促進剤の添加によって、酵母の発酵能が増強されている。1.5Lの容器の下段にサンショウの果皮の粉砕物を、上段に基材であるゲル濾過材SephadexG50coarseGEヘルスケアジャパン株式会社製を重量比で1:0.1となるように置き、室温に3時間放置することによってサンショウの揮発成分を吸着したゲル濾過材を基材とする吸着物からなるアルコール発酵促進剤を得た。得られたアルコール発酵促進剤を、YPD培地に、風乾物重量で初発モロミ容量当り0.04w/v添加し、さらに酵母を初発菌数が2.7×106cells/mlとなるように加えて28°Cでアルコール発酵させた実施例10。[従来例10]アルコール発酵促進剤を添加しなかった以外は、実施例10と同一の原料を同一条件でアルコール発酵させた従来例10。実施例10と従来例10の発酵開始後24時間時点と48時間時点の炭酸ガス発生量及び96時間時点の生成アルコール濃度を表10に示すとともに、図10に炭酸ガス発生量と発酵時間の関係をグラフで示す。表10及び図10から明らかなように、アルコール発酵促進剤を添加することによって発酵は促進された。例えば発酵開始後24時間時点の炭酸ガス発生量を見てみると、アルコール発酵促進剤を0.04w/v添加した実施例10は5.0gであり、アルコール発酵促進剤を添加していない従来例10の2.0gを上回る炭酸ガスが発生している。また、発酵開始後96時間時点の生成アルコール濃度も、実施例10は7.2v/vであって、従来例10の5.5v/vを上回っている。よって、発酵促進剤の添加によって、酵母の発酵能が増強されている。1.5Lの容器の下段にサンショウの果皮の粉砕物を、上段に基材であるゲル濾過材SephadexG50fineGEヘルスケアジャパン株式会社製を重量比で1:0.01となるように置き、室温に24時間放置することによってサンショウの揮発成分を吸着したゲル濾過材を基材とする吸着物からなるアルコール発酵促進剤を得た。得られたアルコール発酵促進剤を、YPD培地に、風乾物重量で初発モロミ容量当り0.04w/v添加し、さらに酵母を初発菌数が2.7×106cells/mlとなるように加えて28°Cでアルコール発酵させた実施例11。[従来例11]アルコール発酵促進剤を添加しなかった以外は、実施例11と同一の原料を同一条件でアルコール発酵させた従来例11。実施例11と従来例11の発酵開始後24時間時点と48時間時点の炭酸ガス発生量及び96時間時点の生成アルコール濃度を表11に示すとともに、図11に炭酸ガス発生量と発酵時間の関係をグラフで示す。表11及び図11から明らかなように、アルコール発酵促進剤を添加することによって発酵は促進された。例えば発酵開始後24時間時点の炭酸ガス発生量を見てみると、アルコール発酵促進剤を0.04w/v添加した実施例11は3.2gであり、アルコール発酵促進剤を添加していない従来例11の1.8gを上回る炭酸ガスが発生している。また、発酵開始後48時間時点では、従来例11の炭酸ガス発生量が5.7gであるのに対して、実施例11は8.0gと従来例11を上回っている。よって、アルコール発酵促進剤の添加によって、酵母の発酵能が増強されている。1.5Lの容器の下段にサンショウの果皮の粉砕物を、上段に基材であるゲル濾過材SephadexG50coarseGEヘルスケアジャパン株式会社製を重量比で1:1となるように置き、室温に24間放置することによってサンショウの揮発成分を吸着したゲル濾過材を基材とする吸着物からなるアルコール発酵促進剤を得た。得られたアルコール発酵促進剤を、RM培地に、風乾物重量で初発モロミ容量当り0.04w/v添加し、さらにザイモモナス属細菌Zymomonasmobilisを初発菌数が1.1×107cells/mlとなるように加えて28°Cでアルコール発酵させた実施例12。[従来例12]アルコール発酵促進剤を添加しなかった以外は、実施例12と同一の原料を同一条件でアルコール発酵させた従来例12。実施例12と従来例12の発酵開始後24時間時点と36時間時点の炭酸ガス発生量及び72時間時点の生成アルコール濃度を表12に示すとともに、図12に炭酸ガス発生量と発酵時間の関係をグラフで示す。表12及び図12から明らかなように、アルコール発酵促進剤を添加することによって発酵は促進された。例えば発酵開始後24時間時点の炭酸ガス発生量を見てみると、アルコール発酵促進剤を0.04w/v添加した実施例12は6.1gであり、アルコール発酵促進剤を添加していない従来例12の2.9gを上回る炭酸ガスが発生している。また、発酵開始後36時間時点では、従来例12の炭酸ガス発生量が11.2gであるのに対して、実施例12は15.4gと従来例12を上回っている。よって、アルコール発酵促進剤の添加によって、ザイモモナス属細菌の発酵能が増強されている。"