"癌細胞シートの移植により当該癌組織特有の構造を有した、ヒト以外の免疫正常動物。癌細胞が肺扁平上皮癌、乳癌、食道癌、肝癌のいずれか、もしくは2つ以上の癌組織由来の細胞である、請求項1記載のヒト以外の免疫正常動物。癌組織特有の構造が上皮性組織である、請求項1、2のいずれか1項記載のヒト以外の免疫正常動物。癌組織特有の構造が生体内の当該癌由来の組織の場所に作製された、請求項1~3のいずれか1項記載のヒト以外の免疫正常動物。ヒト以外の免疫正常動物がラット、マウス、モルモット、ウサギ、ブタ、ヤギ、ヒツジ、サルであることを特徴とする、請求項1~4のいずれか1項記載のヒト以外の免疫正常動物。0~80°Cの温度範囲で水和力が変化するポリマーを表面に被覆した細胞培養支持体上で、ポリマーの水和力の弱い温度域で癌細胞を培養し、その後、培養液をポリマーの水和力の強い状態となる温度に変化させることで培養した癌細胞を蛋白質分解酵素による処理を施すことなく細胞培養支持体からシート状に剥離させ、ヒト以外の免疫正常動物の所定部位に移植することを特徴とするヒト以外の免疫正常動物の製造方法。移植する癌細胞シートを所定の大きさを有する所定の形状とすることで、当該動物の癌組織の大きさ、及びまたは形状を制御する、請求項6記載のヒト以外の免疫正常動物の製造方法。剥離方法が培養終了時に培養細胞上にキャリアを密着させ、そのままキャリアと共に剥離する方法である、請求項6、7のいずれか1項記載のヒト以外の免疫正常動物の製造方法。移植される場所が使用する癌細胞由来の組織である、請求項6~8のいずれか1項記載のヒト以外の免疫正常動物の製造方法。癌細胞が生体組織から採取されたものである、請求項6~9のいずれか1項記載のヒト以外の免疫正常動物の製造方法。癌細胞がヒト由来のものである、請求項6~10のいずれか1項記載のヒト以外の免疫正常動物の製造方法。0~80°Cの温度範囲で水和力が変化するポリマーがポリN-イソプロピルアクリルアミドである、請求項6~11のいずれか1項記載のヒト以外の免疫正常動物の製造方法。請求項1~5のいずれか1項記載のヒト以外の免疫正常動物を利用した腫瘍形成能評価方法。請求項1~5のいずれか1項記載のヒト以外の免疫正常動物を利用した腫瘍転移能評価方法。請求項1~5のいずれか1項記載のヒト以外の免疫正常動物に対して被検物質を投与し、当該被検物質の腫瘍形成能への影響を判定することを特徴とする抗腫瘍剤の選別方法。本発明は、上記のような従来技術の問題点を解決することを意図してなされたものである。すなわち、本発明は、従来技術と全く異なった発想からの新規な免疫機能を有する動物を使った癌細胞移植動物を提供することを目的とする。本発明者らは、上記課題を解決するために、種々の角度から検討を加えて、研究開発を行った。その結果、驚くべくことに、0~80°Cの温度範囲で水和力が変化するポリマーを表面に被覆した細胞培養支持体上で、ポリマーの水和力の弱い温度域で癌細胞を培養し、その後、培養液をポリマーの水和力の強い状態となる温度に変化させることで培養した癌細胞を剥離させ、免疫正常動物の所定部位に移植すると効率良く癌細胞を生着させられ、生体内の免疫機構に攻撃を受けながら、より生体内の癌組織様の構造の癌が形成されることが分かった。しかも、その癌細胞をシート状とし、その癌細胞シートを所定の大きさを有する所定の形状とすることで、当該動物の癌組織の大きさ、及びまたは形状を制御しうることが判明した。本発明はかかる知見に基づいて完成されたものである。すなわち、本発明は、癌細胞シートの移植により当該癌組織特有の構造を有したヒト以外の免疫正常動物を提供する。また、本発明は、0~80°Cの温度範囲で水和力が変化するポリマーを表面に被覆した細胞培養支持体上で、ポリマーの水和力の弱い温度域で癌細胞を培養し、その後、培養液をポリマーの水和力の強い状態となる温度に変化させることで培養した癌細胞を蛋白質分解酵素による処理を施すことなく細胞培養支持体からシート状に剥離させ、ヒト以外の免疫正常動物の所定部位に移植することを特徴とするヒト以外の免疫正常動物の製造方法を提供する。加えて、本発明は、上記癌細胞移植動物を利用した腫瘍形成能評価方法、腫瘍転移能評価方法、抗腫瘍剤の選別方法を提供する。本発明に記載される免疫正常癌細胞移植動物であれば、移植した癌細胞を効率良く癌化させられるだけでなく、癌組織をより本来あるべき形態で実験動物内に再現されており、従って、抗腫瘍剤を開発する上でのスクリーニング、癌化メカニズム等の研究開発を進められるようになる。本発明は、免疫正常動物に癌組織を形成させたものである。本発明に使用される癌細胞は特に限定されないが、例えば、肺扁平上皮癌、乳癌、食道癌、肝癌等の癌組織のいずれかから直接採取して得られた細胞、或いはそれらの混合物、或いは、例えば、KLN-205、Luc2-4T1、HBC-4、BSY-1、HBC-5、MCF-5、MCF-7、MDA-MB-231、U251、SF-268、SF-295、SF-539、SNB-75、SNB-78、HCC2998、KM-12、HT-29、WiDr、HCT-15、HCT-116、NCI-H23、NCI-H226、NCI-H522、NCI-H460、A549、DMS273、DMS114、LOX-IMVI、OVCAR-3、OVCAR-4、OVCAR-5、OVCAR-8、SK-OV-3、RXF-631L、ACHN、St-4、MKN1、MKN7、MKN28、MKN45、MKN74などの細胞株、及びそれらの混合物等が挙げられる。また、いわゆる移植不能な細胞株として知られる例えばMGT-40、MGT-90、CS-C9、CS-C20などの細胞株も本発明で示すところの技術であれば、その高い生着率により移植できるようになる。これらの細胞の由来は特に制約されるものではないが、たとえばヒト、イヌ、ネコ、ウサギ、ラット、マウス、モルモット、ブタ、ヒツジ、ヤギ、サル等が挙げられる。本発明における細胞培養のための培地は培養される細胞に対し通常用いられるものを用いれば特に制約されるものではない。本発明において移植される動物としては、生体内に形成される癌組織をより本来の形態で発現させるために免疫が正常な動物を利用する。そのような動物としては、ラット、マウス、モルモット、ウサギ、ブタ、ヤギ、ヒツジ、サル等が挙げられるが、本発明は免疫が正常なヒト以外の動物であれば特に限定されるものではない。本発明によれば、上述した癌細胞は以下に示すような技術等で癌細胞シート化され、免疫正常動物へ移植される。移植された癌細胞シートは、本来、生体が有している免疫機構で攻撃を受け、その後、生体の免疫機構に打ち勝って、生体内で癌組織を形成していくこととなる。例えば、肺扁平上皮癌であれば、肺扁平上皮癌特有の上皮組織等が形成され、乳癌であれば乳癌特有の粘液癌組織、腺上皮組織、小葉組織等が形成される。また、食道癌であれば、食道癌特有の扁平上皮癌組織や腺癌様組織が形成され、肝癌であれば、肝癌特有の上皮組織、超音波検査において特徴的なモザイクパターン様の構造を有する肝癌組織を作製できる。本発明とは、このような過程を経て形成された癌組織を有する免疫正常動物を示すものである。こうして得られた癌組織は生体内に長期に安定に存在し、癌組織の構造も癌組織本来の形態に近く、例えば、血管網が密に形成され、他組織への侵潤も発現させられることを見出した。また、本発明の動物であれば、生体内で形成された癌組織へ攻撃する免疫関連細胞の動向も観察できることも分かった。さらに、本発明であれば、癌細胞シートを当該癌細胞が存在していた癌組織の場所へ移植すれば、そのものが原発癌のモデルとなり、その原発癌を成育させ転移させれば転移癌のモデルとなる。このように、本発明とは対象とする癌細胞をシート化し、その癌が本来存在していた場所へ移植し、生体内で本来、起こっている現象を忠実に再現することを目的とした技術を示すものである。本発明における癌細胞シートの製造方法は特に限定されないが、例えば、上記癌細胞を0~80°Cの温度範囲で水和力が変化するポリマーを表面に被覆した細胞培養支持体上で、ポリマーの水和力の弱い温度域で培養し、剥離させることで作製できる。その際、培養温度としては通常、細胞を培養する温度である37°Cが好ましい。本発明に用いる温度応答性高分子はホモポリマー、コポリマーのいずれであってもよい。このような高分子としては、例えば、特開平2-211865号公報に記載されているポリマーが挙げられる。具体的には、例えば、以下のモノマーの単独重合または共重合によって得られる。使用し得るモノマーとしては、例えば、メタアクリルアミド化合物、N-若しくはN,N-ジアルキル置換メタアクリルアミド誘導体、またはビニルエーテル誘導体が挙げられ、コポリマーの場合は、これらの中で任意の2種以上を使用することができる。更には、上記モノマー以外のモノマー類との共重合、ポリマー同士のグラフトまたは共重合、あるいはポリマー、コポリマーの混合物を用いてもよい。また、ポリマー本来の性質を損なわない範囲で架橋することも可能である。その際、培養、剥離されるものが細胞であることから、分離が5°C~50°Cの範囲で行われるため、温度応答性ポリマーとしては、ポリ-N-n-プロピルアクリルアミド単独重合体の下限臨界溶解温度21°C、ポリ-N-n-プロピルメタクリルアミド同27°C、ポリ-N-イソプロピルアクリルアミド同32°C、ポリ-N-イソプロピルメタクリルアミド同43°C、ポリ-N-シクロプロピルアクリルアミド同45°C、ポリ-N-エトキシエチルアクリルアミド同約35°C、ポリ-N-エトキシエチルメタクリルアミド同約45°C、ポリ-N-テトラヒドロフルフリルアクリルアミド同約28°C、ポリ-N-テトラヒドロフルフリルメタクリルアミド同約35°C、ポリ-N,N-エチルメチルアクリルアミド同56°C、ポリ-N,N-ジエチルアクリルアミド同32°Cなどが挙げられる。本発明に用いられる共重合のためのモノマーとしては、ポリアクリルアミド、ポリ-N、N-ジエチルアクリルアミド、ポリ-N、N-ジメチルアクリルアミド、ポリエチレンオキシド、ポリアクリル酸及びその塩、ポリヒドロキシエチルメタクリレート、ポリヒドロキシエチルアクリレート、ポリビニルアルコール、ポリビニルピロリドン、セルロース、カルボキシメチルセルロースなどの含水ポリマーなどが挙げられるが、特に制約されるものではない。これらのポリマーは、ポリマー特有の温度を境に、それまで脱水和された状態が急激に水和された状態へ変化する。このものが細胞培養支持体材料表面に被覆されていれば、材料は癌細胞が付着、増殖する表面から細胞が付着できないような表面へ変化し、培養していた癌細胞を剥離させられるようになる。その温度域とは0°C~80°C、好ましくは10°C~50°C、さらに好ましくは20°C~45°Cであることが判明した。80°Cを越えると癌細胞が死滅する可能性があるので好ましくない。また、0°Cより低いと一般に細胞増殖速度が極度に低下するか、または癌細胞が死滅してしまうため、やはり好ましくない。本発明とはトリプシンのような酵素を全く使用せずに、培養温度を変化させるだけで、培養していた癌細胞を剥離させられ、従って剥離した癌細胞シートもトリプシンなどによる障害を受けておらず、低損傷なものとなる。培養した癌細胞を剥離させる際、酵素処理を伴わないため接着性蛋白質が破壊されずに残っているため移植後の生着性が良く、さらにその癌細胞がシート状である場合、移植時における移植部位からの漏出も抑えられ効率良く癌細胞移植動物を製造できるようになる。各種ポリマーの基材表面への被覆方法は、特に制限されないが、例えば、特開平2-211865号公報に記載されている方法に従ってよい。すなわち、かかる被覆は、基材と上記モノマーまたはポリマーを、電子線照射EB、γ線照射、紫外線照射、プラズマ処理、コロナ処理、有機重合反応のいずれかにより、または塗布、混練等の物理的吸着等により行うことができる。細胞付着部における親水性ポリマーの固定化量は移動させたい細胞を付着させられるに十分な量が固定化されていれば良く特に限定されるものではないが、その固定化量は使用する細胞が癌細胞であるため0.4μg/cm2以上、好ましくは0.8μg/cm2以上、さらに好ましくは1.2μg/cm2以上である。ポリマーの固定化量の測定は常法に従えば良く、例えばFT-IR-ATRを用いて細胞付着部を直接測る方法、あらかじめラベル化したポリマーを同様な方法で固定化し細胞付着部に固定化されたラベル化ポリマー量より推測する方法などが挙げられるがいずれの方法を用いても良い。本発明における培養基材の形状は特に制約されるものではないが、例えばディッシュ、マルチプレート、フラスコ、セルインサートのような形態のもの、或いは平膜状のものなどが挙げられる。被覆を施される基材としては、通常細胞培養に用いられるガラス、改質ガラス、ポリスチレン、ポリメチルメタクリレート等の化合物を初めとして、一般に形態付与が可能である物質、例えば、上記以外の高分子化合物、セラミックス類など全て用いることができる。本発明における培養癌細胞は培養時にディスパーゼ、トリプシン等で代表される蛋白質分解酵素による損傷を受けていないものである。そのため、基材から剥離された癌細胞は接着性蛋白質を有し、癌細胞をシート状に剥離させた際には細胞-細胞間のデスモソーム構造がある程度保持されたものとなる。このことにより、移植時において患部組織と良好に接着することができ、効率良い移植を実施することができるようになる。一般に蛋白質分解酵素であるディスパーゼに関しては、細胞-細胞間のデスモソーム構造については10~60保持した状態で剥離させることができることで知られているが、細胞-基材間の基底膜様蛋白質等を殆ど破壊してしまうため、得られる細胞シートは強度の弱いものとなる。これに対して、本発明の癌細胞シートは、デスモソーム構造、基底膜様蛋白質共に80以上残存された状態のものであり、上述したような種々の効果を得ることができる。さらに、本発明のように、免疫が正常な動物において癌細胞は異物として認識され免疫担当細胞等に攻撃を受ける。このような免疫正常動物へ従来のような個々の癌細胞を注入しても、注入された癌細胞のほとんどが死滅し、炎症が起こり、肉芽組織となり、効率良く癌組織を有する担癌動物を作製することができない。しかしながら、本発明のような癌細胞シートを使用すれば、移植された癌細胞シートは速やかに被移植部位へ付着し、生体側の免疫担当細胞の攻撃を受けつつも耐えることができ、その後、生体内の免疫機構に打ち勝ち、癌組織を形成していくこととなる。本発明における癌細胞シートであれば、免疫正常動物内においても効率良く癌組織を形成させられることが分かった。以上のことを温度応答性ポリマーとしてポリN-イソプロピルアクリルアミドを例にとり説明する。ポリN-イソプロピルアクリルアミドは31°Cに下限臨界溶解温度を有するポリマーとして知られ、遊離状態であれば、水中で31°C以上の温度で脱水和を起こしポリマー鎖が凝集し、白濁する。逆に31°C以下の温度ではポリマー鎖は水和し、水に溶解した状態となる。本発明では、このポリマーがシャーレなどの基材表面に被覆、固定されたものである。したがって、31°C以上の温度であれば、基材表面のポリマーも同じように脱水和するが、ポリマー鎖が基材表面に被覆、固定されているため、基材表面が疎水性を示すようになる。逆に、31°C以下の温度では、基材表面のポリマーは水和するが、ポリマー鎖が基材表面に被覆、固定されているため、基材表面が親水性を示すようになる。このときの疎水的な表面は癌細胞が付着、増殖できる適度な表面であり、また、親水的な表面は癌細胞が付着できないほどの表面となり、培養中の癌細胞、もしくは癌細胞シートも冷却するだけで剥離させられることになる。本発明の方法において、培養した癌細胞を支持体材料から剥離回収するには、培養された癌細胞を必要に応じてキャリアに密着させ、癌細胞の付着した支持体材料の温度を支持体基材の被覆ポリマーの水和する温度にすることによって、そのままキャリアとともに剥離することができる。その際に、癌細胞シートと支持体の間に水流を当て剥離を円滑に行っても良い。なお、シートを剥離することは細胞を培養していた培養液中において行うことも、その他の等張液中において行うことも可能であり、目的に合わせて選択することができる。癌細胞、及び癌細胞シートを密着させる際に使用するキャリアは、本発明の細胞を保持するための構造物であり、例えば高分子膜または高分子膜から成型された構造物、金属性治具などを使用することができる。例えば、キャリアの材質として高分子を使用する場合、ポリビニリデンジフルオライドPVDF、ポリプロピレン、ポリエチレン、セルロース及びその誘導体、紙類、キチン、キトサン、コラーゲン、ウレタン、ゼラチン、フィブリングルー等の材料を膜状、多孔膜状、不織布状、織布状を挙げることができる。キャリアの形状は、特に限定されるものではない。本発明において移植される癌細胞は、生着性が良好なため総数にして1×105個以下で良く、好ましくは5×105個以下、さらには8×105個以下であることが好ましい。本発明の場合、8×105個以上にすると大きな癌組織が得られることなり好都合であるが、一回に使用する細胞数が多くなり好ましくない。移植される場所は、皮下であってもそれぞれの癌細胞由来の組織に直接移植しても良く、何ら制約されるものではない。本発明の免疫正常癌細胞移植動物であれば、移植した癌細胞を効率良く癌化させられるだけでなく、癌組織をより本来あるべき形態で実験動物内に再現されており、従って、抗腫瘍剤を開発する上でのスクリーニング、癌化メカニズム等の研究開発を進められるようになる。具体的には、本発明の免疫正常癌細胞移植動物をCT、MRI、超音波、PET等の画像診断を利用することで腫瘍形成能を評価することができる。また、本発明の免疫正常動物を利用し、CT、MRI、超音波、PET等の画像診断、発光イメージングや腫瘍マーカーを測定することで腫瘍転移能を評価することができるようになる。さらに、本発明の免疫正常動物に対して、被検物質を投与し、当該被検物質の腫瘍形成能への影響を判定することで有効な抗腫瘍剤を選別することができるようになる。また、逆に、本発明の免疫正常動物に対して、既存の抗腫瘍剤、ワクチン、丸山ワクチン等の治療薬を投与し癌組織の形態を観察することで、既存の治療薬の効能を検討することができるようになる。以下に、本発明を実施例に基づいて更に詳しく説明するが、これらは本発明を何ら限定するものではない。マウス肺扁平上皮癌KLN-205を24wellデッシュに播種し、コンフルエントの70になるまで培養した。この癌細胞に対して、ルシフェラーゼ遺伝子をもつレンチウイルスに感染させ、ルシフェラーゼ遺伝子を導入した。この細胞を1wellに1細胞となるように、96well播種し、2週間培養した。その後、ルシフェリンを添加して、IVISを用いて発光している細胞を確認し、その細胞を継代培養してルシフェラーゼ遺伝子をもつ細胞を得た。次に、市販の細胞培養器材に温度応答性ポリマーであるポリN-イソプロピルアクリルアミドを1.9μg/cm2被覆し、癌細胞培養領域周囲をポリアクリルアミドで固定化し癌細胞を付着させないようにし、癌細胞接着領域をφ15mmとした温度応答性培養基材を作製した。このものの表面へルシフェラーゼ遺伝子をコートしたKLN-205を1.0x106cells播種し、37°Cでインキュベーションした。24時間後、コンフルエントになったことを確認後、培地を37°Cに温めた培養液に交換し、さらに3日間培養した。その後、培養皿を20°Cのインキュベーターに移し、2時間低温処理を施した。この細胞をピペッティングにより培養基材から剥離させた。得られた癌細胞シートをBDF1マウスに移植したφ:15mm、5.0x105cellsこの作業を本発明ではCellSheetと表記する場合がある。。移植後マウスの腫瘍体積を計測するために、移植部周辺の隆起部分をノギスを用いて計測した。また、ルシフェリンを腹腔内投与して、IVISを用いて腫瘍細胞の発光量を計測した。図1に移植5日後図中のD5と14日後図中のD14のようすを示す。移植した癌細胞シートが肥大化しているようすが分かる。図2に移植1日後図中のD1、移植3日後図中のD3、移植7日後図中のD7、移植14日後図中のD14のヘルシフェラーゼ発光のようすを示す。移植後、長期わたって癌細胞シートが存在していることが分かる。マウスを犠死させ、移植部位の組織片を回収した。組織片は固定処理後、組織切片を作製後、HE染色し、癌細胞シートの様子を観察した。移植1日後の移植部のようすを図3に示す。図3-1及び図3-2は移植部をHE染色、図3-3はサイトケラチン5を染色した時のようすを示す。癌細胞が好中球に攻撃されているようすが分かる。移植5日後のようすを示す図4に示す。図4-1は移植部をHE染色、図4-2はサイトケラチン5を染色した時のようすを示す。炎症系の細胞が減り、癌組織が形成されつつあることが分かる。移植14日後の移植部のようすを図5に示す。図5-1、図5-3右図、左図は移植部をHE染色、図5-2はサイトケラチン5を染色した時のようすを示す。癌細胞と線維系の細胞が混在し、癌組織中に上皮性の構造、並びに血管様の空隙が形成されているようすが分かる。HE染色像より、移植初期では、核の異型や細胞に対する核の割合が高い細胞が観察されたことから、この細胞が移植した癌細胞であることが確認された。これらの細胞は上皮状に配列しており、空洞を形成し筋肉側と皮膚側の両面に生着していることが確認された。また、扁平上皮癌のマーカーに対して陽性であることから、移植した細胞が扁平上皮癌であることがわかった。この腫瘍組織は、移植5日後から間質系の細胞が観察された。実施例1と同様に、細胞接着領域をφ:15mmに制御したポリアクリルアミドパターン化音頭応答性細胞培養基材ポリ-N-イソプロピルアクリルアミドを2.0μg/cm2被覆を作製し、Luc2-4T1マウス乳癌細胞を1.0x106cells播種し、37°Cでインキュベーションした。24時間後、コンフルエントになったことを確認後、培地を37°Cに温めた培養液に交換し、さらに2日間培養した。その後、温度応答性培養基材を20°Cのインキュベーターに移し、2時間低温処理を施した。この細胞をピペッティングにより基材から剥離した。得られた癌細胞シートをBALB/cマウスに移植した。マウスの腫瘍体積を計測するために、移植部周辺の隆起部分をノギスを用いて計測した。また、ルシフェリンを腹腔内投与して、IVISを用いて腫瘍細胞の発光量を計測した。図17に移植1日後図中のD1、移植7日後図中のD7と14日後図中のD14のようすを示す。また、移植14日後の移植部のようすをHE染色して結果を図18に示す。粘液癌特有の構造を示し、癌細胞が筋組織に浸食しているようす、並びに血管周囲に赤血球が漏出しているようすが分かる。"