"大豆残渣および糖類を含有する培地中で酵母を培養し、培養上清からセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を得る、セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造方法。前記酵母は、Schizosaccharomyces属の酵母、Pichia属の酵母、Candida属の酵母、Debaryomyces属の酵母、Cryptococcus属の酵母、Hansenula属の酵母、Bullera属の酵母、Rhodotorula属の酵母、Sporobolomyces属の酵母、Brettanomyces属の酵母、及びYarrowia属の酵母から選ばれる少なくとも何れかの一種の酵母である、請求項1に記載のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造方法。前記Schizosaccharomyces属の酵母が、Schizosaccharomycesoctoporusである、請求項2に記載のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造方法。前記Pichia属の酵母が、Pichiaanomala、Pichiaguilliermondii、Pichianorvegensis、Pichiamembranifaciens又はPichiaburtoniiである、請求項2に記載のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造方法。前記キャンディダCandida属の酵母が、キャンディダジラノイデスCandidazeylanoides、キャンディダボイディニCandidaboidinii、キャンディダパラプシロシスCandidaparapsilosis、キャンディダマグノリアエCandidamagnoliae、キャンディダマルトーサCandidamaltosa、キャンディダステアトリチカCandidasteatolytica、キャンディダブチリCandidabutyri、キャンディダラギーCandidarhagii又はキャンディダメタプシローシスCandidametapsilosisである、請求項2に記載のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造方法。前記デバリオマイセスDebaryomyces属の酵母が、デバリオマイセスハンセニDebaryomyceshanseniiまたはデバリオマイセスバンリジエDebaryomycesvanrijiaeである、請求項2に記載のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造方法。前記Cryptococcus属の酵母が、Cryptococcuslaurentii又はCryptococcushungaricusである、請求項2に記載のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造方法。前記ハンセヌラHansenula属の酵母が、ハンセヌラポリモルファHansenulapolymorpha又はハンセヌラシフェリイHansenulaciferriiである、請求項2に記載のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造方法。前記ブレラBullera属の酵母が、ブレラツガエBulleratsugaeである、請求項2に記載のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造方法。前記Rhodotorula属の酵母が、Rhodotorulamucilaginosa又はRhodotorulaglutinisである、請求項2に記載のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造方法。前記スポロボロミセスSporobolomyces属の酵母が、スポロボロミセスロゼウスSporobolomycesroseusである、請求項2に記載のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造方法。前記ブレタノマイセスBrettanomyces属の酵母が、ブレタノマイセスクラウセニィBrettanomycesclausseniiである、請求項2に記載のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造方法。前記ヤロウィアYarrowia属の酵母が、ヤロウィアリポリティカYarrowialipolyticaである、請求項2に記載のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造方法。前記糖類は葡萄糖である、請求項1~13の何れか一項に記載のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造方法。前記培地は、大豆残渣、葡萄糖及び水からなるものである、請求項14に記載のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造方法。前記培地の中に前記大豆残渣を8~12wv、前記糖類を0.8~1.2wv含有する、請求項15に記載のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造方法。前記培養の温度は27~35°Cである、請求項1~16の何れか一項に記載のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造方法。前記培養時間は1~7日間である、請求項1~17の何れか一項に記載のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造方法。前記培養して得られた培養液を遠心分離により、前記上清を得る、請求項1~18の何れか一項に記載のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造方法。前記遠心分離した上清に、エタノールを加え、セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤をとする、請求項19に記載のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造方法。上記エタノールを加えたものを、さらに、超音波処理、遠心分離、ろ過、真空乾燥処理で精製して、セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤として得る、請求項20に記載のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造方法。大豆残渣および糖類を含有する培地中で酵母を培養して得られる、大豆残渣の発酵エキスのセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進のための使用。大豆残渣および糖類を含有する培地中で酵母を培養して得られる、大豆残渣の発酵エキスのセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤としての使用。大豆残渣および糖類を含有する培地中で酵母を培養して得られる、大豆残渣の発酵エキスのセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造のための使用。前記酵母は、Schizosaccharomyces属の酵母、Pichia属の酵母、Candida属の酵母、Debaryomyces属の酵母、Cryptococcus属の酵母、Hansenula属の酵母、Bullera属の酵母、Rhodotorula属の酵母、Sporobolomyces属の酵母、Brettanomyces属の酵母、及びYarrowia属の酵母から選ばれる少なくとも何れかの一種の酵母である、請求項22~24の何れか一項に記載の使用。前記Schizosaccharomyces属の酵母が、Schizosaccharomycesoctoporusである、請求項25に記載の使用。前記Pichia属の酵母が、Pichiaanomala、Pichiaguilliermondii、Pichianorvegensis、Pichiamembranifaciens又はPichiaburtoniiである、請求項25に記載の使用。前記キャンディダCandida属の酵母が、キャンディダジラノイデスCandidazeylanoides、キャンディダボイディニCandidaboidinii、キャンディダパラプシロシスCandidaparapsilosis、キャンディダマグノリアエCandidamagnoliae、キャンディダマルトーサCandidamaltosa、キャンディダステアトリチカCandidasteatolytica、キャンディダブチリCandidabutyri、キャンディダラギーCandidarhagii又はキャンディダメタプシローシスCandidametapsilosisである、請求項25に記載の使用。前記デバリオマイセスDebaryomyces属の酵母が、デバリオマイセスハンセニDebaryomyceshanseniiまたはデバリオマイセスバンリジエDebaryomycesvanrijiaeである、請求項25に記載の使用。前記Cryptococcus属の酵母が、Cryptococcuslaurentii又はCryptococcushungaricusである、請求項25に記載の使用。前記ハンセヌラHansenula属の酵母が、ハンセヌラポリモルファHansenulapolymorpha又はハンセヌラシフェリイHansenulaciferriiである、請求項25に記載の使用。前記ブレラBullera属の酵母が、ブレラツガエBulleratsugaeである、請求項25に記載の使用。前記Rhodotorula属の酵母が、Rhodotorulamucilaginosa又はRhodotorulaglutinisである、請求項25に記載の使用。前記スポロボロミセスSporobolomyces属の酵母が、スポロボロミセスロゼウスSporobolomycesroseusである、請求項25に記載の使用。前記ブレタノマイセスBrettanomyces属の酵母が、ブレタノマイセスクラウセニィBrettanomycesclausseniiである、請求項25に記載の使用。前記ヤロウィアYarrowia属の酵母が、ヤロウィアリポリティカYarrowialipolyticaである、請求項25に記載の使用。本発明は、上記従来技術のある課題を解決するためになされたものであり、セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を安価で効率良く製造する方法を提供することを目的とする。本発明者は、上記課題を解決するため鋭意検討した結果、大豆残渣および糖類を含有する培地中で酵母を培養して、セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を安価で効率良く得ることを見出し、本発明をなすに至ったものである。本発明は、大豆残渣および糖類を含有する培地中で酵母を培養し、培養上清からセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を得る、セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造方法を提供する。また、本発明は、大豆残渣および糖類を含有する培地中で酵母を培養して得られる、大豆残渣の発酵エキスのセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進のための使用に関する。また、本発明は、大豆残渣および糖類を含有する培地中で酵母を培養して得られる、大豆残渣の発酵エキスのセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤としての使用に関する。また、本発明は、大豆残渣および糖類を含有する培地中で酵母を培養して得られる、大豆残渣の発酵エキスのセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造のための使用に関する。本発明では、酵母は、Schizosaccharomyces属の酵母、Pichia属の酵母、Candida属の酵母、Debaryomyces属の酵母、Cryptococcus属の酵母、Hansenula属の酵母、Bullera属の酵母、Rhodotorula属の酵母、Sporobolomyces属の酵母、Brettanomyces属の酵母、及びYarrowia属の酵母から選ばれる少なくとも何れか一種のものであってもよい。本発明に係る製造方法によれば、特定微生物を利用し大豆残渣のような入手が容易であるものを培地の主原料として用いることで、セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を安価で効率良く得ることができる。当該促進剤は、皮膚の持つセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生能力を効率的に向上させることができるため、皮膚の保湿機能を有効に向上させることもできる。本発明の製造方法は、大豆残渣および糖類を含有する培地中で酵母を培養し、培養上清からセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を得ることである。セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造に使用できる微生物本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造に使用され得る微生物としては、Schizosaccharomyces属の酵母、Pichia属の酵母、Candida属の酵母、Debaryomyces属の酵母、Cryptococcus属の酵母、Hansenula属の酵母、Bullera属の酵母、Rhodotorula属の酵母、Sporobolomyces属の酵母、Brettanomyces属の酵母、及びYarrowia属の酵母から選ばれる少なくとも何れか一種のものであってもよい。本発明に使用できるSchizosaccharomyces属に属する微生物としては、食品工業分野に一般的に使われる、Schizosaccharomycesoctoporus、Schizosaccharomycespombe等が挙げられる。また、これらの微生物を常法に基づき得られた変異株も包含する。このうち、得られる製造物がより高いセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進効果を有するという観点から、Schizosaccharomycesoctoporusが好ましい。本発明に使用できるPichia属に属する微生物としては、食品工業分野に一般的に使われる、Pichiaanomala、Pichiaguilliermondii、Pichianorvegensis、Pichiamembranifaciens、Pichiaburtonii、Pichiafarinose、PichiaKluyveri等が挙げられる。また、これらの微生物を常法に基づき得られた変異株も包含する。このうち、得られる製造物がより高いセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進効果を有するという観点から、Pichiaanomala、Pichiaguilliermondii、Pichianorvegensis、Pichiamembranifaciens、Pichiaburtoniiが好ましい。また、Pichiamembranifaciensは、Pichiamembranaefaciens、Pichiaalcoholophila、Pichiahyalospora、Pichiascaptomyzae、Williabelgica又はZygopichiaguilliermondiiとも言われる。また、Pichiaburtoniiは、Candidafibrae、Dematiumchodati、Endomycopsischodati、Hyphopichiaburtonii又はTrichosporonbehrendiiとも言われる。本発明に使用できるキャンディダ属に属する微生物としては、食品分野に使われる、キャンディダジラノイデスCandidazeylanoides、キャンディダボイディニCandidaboidinii、キャンディダパラプシロシスCandidaparapsilosis、キャンディダマグノリアエCandidamagnoliae、キャンディダマルトーサCandidamaltosa、キャンディダステアトリチカCandidasteatolytica、キャンディダブチリCandidabutyri、キャンディダラギーCandidarhagii、キャンディダメタプシローシスCandidametapsilosis、キャンディダアルビカンス、キャンディダホルミイ、またはキャンディダバリダCandidavalidaから選択される少なくとも1種の微生物が挙げられる。また、これらの微生物を常法に基づき得られた変異株も包含する。前記微生物は、大豆残渣および糖類を含有する培地中で培養することで、培養上清から、表皮細胞のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生能を向上させる剤が得られる作用を示す。その中でも、本発明で得られる剤が、よりセラミド産生促進効果及び/又はグルコシルセラミド産生促進効果を有するという観点から、好ましくはキャンディダジラノイデスCandidazeylanoides、キャンディダボイディニCandidaboidinii、キャンディダパラプシロシスCandidaparapsilosis、キャンディダマグノリアエCandidamagnoliae、キャンディダマルトーサCandidamaltosa、キャンディダステアトリチカCandidasteatolytica異名:Candidahellenical、キャンディダブチリCandidabutyri、キャンディダラギーCandidarhagii又はキャンディダメタプシローシスCandidametapsilosisである。本発明に使用できるデバリオマイセスDebaryomyces属に属する微生物としては、食品分野に使われる、デバリオマイセスハンセニDebaryomyceshansenii、デバリオマイセスポリモファスDebaryomycespolymorphus、またはデバリオマイセスバンリジエDebaryomycesvanrijiae等から選択される少なくとも1種の微生物が挙げられる。また、これらの微生物を常法に基づき得られた変異株も包含する。前記微生物は、大豆残渣および糖類を含有する培地中で培養することで、培養上清から、表皮細胞のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生能を向上させる剤が得られる作用を示す。その中でも、本発明で得られる剤が、よりセラミド産生促進効果及び/又はグルコシルセラミド産生促進効果を有することから、好ましくはデバリオマイセスハンセニDebaryomyceshanseniiまたはデバリオマイセスバンリジエDebaryomycesvanrijiaeである。本発明に使用できるCryptococcus属に属する微生物としては、食品工業分野に一般的に使われる、Cryptococcuslaurentii、Cryptococcushungaricus、Cryptococcusterreus等が挙げられる。また、これらの微生物を常法に基づき得られた変異株も包含する。なかでは、得られる製造物がより高いセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進効果を有するという観点から、Cryptococcuslaurentii、Cryptococcushungaricusが好ましい。本発明に使用できるハンセヌラHansenula属に属する微生物としては、食品分野に使われる、ハンセヌラポリモルファHansenulapolymorpha、ハンセヌラシフェリイHansenulaciferrii、ハンセヌラサブペリクローサHansenulasubpelliculosa、ハンセヌラサターナスHansenulasaturnus、ハンセヌラアノマラHansenulaanomala等から選択される少なくとも1種の微生物が挙げられる。また、これらの微生物を常法に基づき得られた変異株も包含する。前記微生物は、大豆残渣および糖類を含有する培地中で培養することで、培養上清から、表皮細胞のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生能を向上させる剤が得られる作用を示す。その中でも、本発明で得られる剤が、よりセラミド産生促進効果及び/又はグルコシルセラミド産生促進効果を有することから、好ましくはハンセヌラポリモルファHansenulapolymorpha異名:ピキアアングスタPichiaangusta、ハンセヌラアングスタHansenulaangusta、オガタエアポリモルファOgataeapolymorpha、又はハンセヌラシフェリイHansenulaciferriiである。本発明に使用できるブレラBullera属に属する微生物としては、食品分野に使われる、ブレラツガエBulleratsugae、ブレラバリアビリスBulleravariabilis、ブレラアルバスBulleraalbus等から選択される少なくとも1種の微生物が挙げられる。また、これらの微生物を常法に基づき得られた変異株も包含する。前記微生物は、大豆残渣および糖類を含有する培地中で培養することで、培養上清から、表皮細胞のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生能を向上させる剤が得られる作用を示す。その中でも、本発明で得られる剤が、よりセラミド産生促進効果及び/又はグルコシルセラミド産生促進効果を有することから、好ましくはブレラツガエBulleratsugae異名:スポロボロミセスツガエSporobolomycestsugaeである。本発明に使用できるRhodotorula属に属する微生物としては、Rhodotorulamucilaginosa、Rhodotorulaglutinis、Rhodotorulaminuta、Rhodotorulapallida、Rhodotorularubra等が挙げられる。また、これらの微生物を常法に基づき得られた変異株も包含する。なかでは、得られる製造物がより高いセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進効果を有するという観点から、Rhodotorulamucilaginosa、Rhodotorulaglutinisが好ましい。本発明に使用できるスポロボロミセスSporobolomyces属に属する微生物としては、食品分野に使われる、スポロボロミセスロゼウスSporobolomycesroseus、スポロボロミセスサルモニカラーSporobolomycessalmonicolor又はスポロボロミセスルバーSporobolomycesruber等から選択される少なくとも1種の微生物が挙げられる。また、これらの微生物を常法に基づき得られた変異株も包含する。前記微生物は、大豆残渣および糖類を含有する培地中で培養することで、培養上清から、表皮細胞のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生能を向上させる剤が得られる作用を示す。その中でも、本発明で得られる剤が、よりセラミド産生促進効果及び/又はグルコシルセラミド産生促進効果を有することから、好ましくはスポロボロミセスロゼウスSporobolomycesroseusである。本発明に使用されるブレタノマイセスBrettanomyces属に属する微生物としては、食品分野に使われ、ブレタノマイセスクラウセニィBrettanomycesclaussenii又はブレタノマイセスアノマラスBrettanomycesanomalus等から選択される少なくとも1種の微生物が挙げられる。また、これらの微生物を常法に基づき得られた変異株も包含する。前記微生物は、大豆残渣および糖類を含有する培地中で培養することで、培養上清から、表皮細胞のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生能を向上させる剤が得られる作用を示す。その中でも、本発明で得られる剤が、よりセラミド産生促進効果及び/又はグルコシルセラミド産生促進効果を有することから、好ましくはブレタノマイセスクラウセニィBrettanomycesclausseniiである。本発明に使用できるヤロウィアYarrowia属に属する微生物としては、ヤロウィアリポリティカYarrowialipolytica等又は、ヤロウィアリポリティカYarrowialipolytica等の微生物を常法に基づき得られた変異株が挙げられる。前記微生物は、大豆残渣および糖類を含有する培地中で培養することで、培養上清から、表皮細胞のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生能を向上させる剤が得られる作用を示す。その中でも、本発明で得られる剤が、よりセラミド産生促進効果及び/又はグルコシルセラミド産生促進効果を有することから、好ましくはヤロウィアリポリティカYarrowialipolytica異名:キャンディダリポリティカCandidalipolytica、キャンディダパラリポリティカCandidaparalipolytica、サッカロマイコプシスリポリティカSaccharomycopsislipolytica、エンドマイコプシスリポリティカEndomycopsislipolytica、Pseudomoniliadeformansである。本発明にかかる微生物酵母は、何れも、中国普通微生物保蔵管理中心CGMCC及び中国典型培養物保蔵中心CCTCC、江南大学工業微生物資源および情報センターCICIMなどの商業ルートで購入できるものである。また、本発明の製造方法においては、上記微生物酵母を1種類単独で又は2種類以上を組み合わせて用いることができる。セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造方法本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造方法は、酵母を、大豆残渣および糖類を含有する培地で培養することで、培養上清からセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を得る。該方法の詳細を以下に記載する。本発明では、上記の微生物の少なくとも1種又は2種以上を、液体培地中で培養することが望ましい。本発明において用いる培地としては、大豆残渣と糖類とを主成分として含有するものである。大豆残渣も糖類も入手やすい原料であるため、本発明の培地が従来より安価上で優れた利点を有する。また、その他には、例えば、1のペプトン、05の酵母粉等を適宜添加してもよい。その中では、大豆残渣とは、大豆を水に浸漬し、水を十分に吸収させて、粉砕、濾過を経て、水を除去して、乾燥して、得られたものである。食品産業において豆乳を搾り取ったという大豆製品を製造する工程で残した大豆残渣を用いることも可能である。糖類としては、例えば葡萄糖、麦芽糖、蔗糖などが挙げられる。また、それらの、いずれかを単独、または混合して使用できる。発酵生産性及び利用性を高める観点、並びにセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進効果を向上させるという観点から、葡萄糖を好適に用いることができる。本発明においては、セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進の効果を高めるという観点から、培地は、大豆残渣、葡萄糖及び水からなるのが好ましい。その中に大豆残渣を5~20wv、より好ましくは8~12wv、葡萄糖を0.2~2wv、より好ましくは08~1.2wv含有することが好ましい。前記微生物の菌体を、セラミド/グルコシルセラミド産生促進剤製造培地に直接接種することにより行う。セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を製造するための培養条件としては、酵母微生物の生理的な特性、酵母微生物の成長に必要な温度時間の最適化、並びにセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進の効果を高める観点から、20~40°C、好ましくは27~35°Cの培養温度で、1~7日、好ましくは48~96時間、より好ましくは68~76時間で培養するのが好ましい。製造物の純度を高める観点から、前記培養により得られた培養液を精製して、上清を得る。精製の方法としては、ろ過、遠心分離、イオン交換または吸着クロマトグラフィー、溶媒抽出、結晶化などの通常用いられる操作を必要に応じて適宜組み合わせて行われてもよい。また、遠心分離により上清を得ることが好ましい。遠心分離の回転数は、2000~4000rpmが好ましく、2500~3500rpmがより好ましい。遠心分離の時間は、0~20分が好ましく、5~15分がより好ましい。具体的には、遠心分離して得られた上記上清にエタノールを加えて殺菌し、本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤としてもよい。また、遠心分離して培養液から菌体を除去し、次いで超音波処理し、遠心分離して上清を回収する。再び、回収した上清をろ過して夾雑物などを除き、さらに真空で乾燥処理して本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤としてもよい。本発明の酵母を培養し、培養上清から得た大豆残渣の発酵エキスは、正常ヒト角化細胞において、セラミド及び/又はグルコシルセラミドの量を増加させる作用を有する。従って、本発明の酵母を培養し、培養上清から得られた大豆残渣の発酵エキスは、セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進のための治療目的又は非治療目的の使用ができ、セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤としての治療目的又は非治療目的の使用もできる。非治療目的の使用には、美容目的の使用や、健康状態の維持のための使用などが含まれる。また、上記の治療目的の使用と、非治療目的の使用は、分けて行うこともできる。また、本発明の酵母を培養し、培養上清から得た大豆残渣の発酵エキスは、セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を製造するために使用できる。本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤は、角質層中のセラミド及び/又はグルコシルセラミドを増加させ、皮膚のバリア機能及び保湿機能を回復及び向上するための医薬品、医薬部外品、化粧品等としても使用できる。また、当該セラミド又はグルコシルセラミド産生促進剤は、セラミド又はグルコシルセラミド産生促進をコンセプトとし、必要に応じてその旨を表示した医薬部外品、化粧品として使用することもできる。本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の使用形態としては、培養細胞へ添加するための添加剤とすることができ、皮膚洗浄剤、メイクアップ化粧料などの皮膚外用剤へ配合することもできる。例えば、ローション、乳液、ゲル、クリーム、軟膏剤、粉末、顆粒等の種々の形態で提供することができる。外用剤の基剤としては、公知の外用基剤でよく、特に限定されない。このような種々の皮膚外用剤を調製するには、本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を単独で、又は、皮膚洗浄剤、メイクアップ化粧料などの皮膚外用剤に配合する、通常の油性成分、保湿剤、粉体、色素、乳化剤、可溶化剤、紫外線吸収剤、増粘剤、薬効成分、香料、防菌防黴剤、植物抽出物、アルコール類等を適宜組み合わせて用いることができる。本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を、培養表皮細胞系へ添加してセラミド及び/又はグルコシルセラミド合成を促進する場合の添加量は、促進剤の乾燥物として、0.0001~10wv、さらに0.001~5wvが好ましい。添加量が0.0001wv以上であると、産生促進の効果を十分にすることになる。添加量が10wv以下であると、表皮細胞への刺激が少ないという点で好ましい。本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の皮膚外用剤への配合量は、大豆残渣の発酵エキスの乾燥物として、セラミド及び/又はグルコシルセラミド合成を十分に促進しして皮膚の保湿能力を効率的に高め、しかも培養物の色や臭いが出にくいことから、全皮膚外用剤の0.01~20wvとするのが好ましく、さらに好ましくは0.1~10wvである。次に、本発明を実施例により詳しく説明するが、本発明の範囲はこれらに限定されるものではない。実施例11<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造発酵液の処理>まず、以下の方法で培地を調製した。大豆を水に入れ、12時間含浸し、大豆に水を十分に吸収させた。水を吸収した大豆を研削して粉砕し、濾過、滴り乾燥し、大豆残渣を得た。当該大豆残渣を、大豆残渣の濃度が10wv、ブドウ糖の濃度が1wvになるように、ブドウ糖及び水と混合して、培地とした。次いで、上記培地100mlを三角フラスコに入れ、Schizosaccharomycesoctoporus江南大学工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMY0123として受託されている。を規定の量で接種し、30°Cで3日間培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、当該EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料1A、1Bとし、さらに、試料1A、1Bをそれぞれ50vvEtOHで溶解し、1vv及び01vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の評価>細胞培養まず、正常ヒトの活性化角化細胞CascadeCoLtdを初代細胞として、75cm2の培養フラスコ増殖因子を含有する培地2mlに、37°C、5CO2のインキュベーターにて80~90コンフルエントの状態に達するまで培養した。継代細胞を175cm2の培養フラスコに80~90コンフルエントの状態に達するまでに持続培養した。継代培養した後のヒト表皮角化細胞を12wellPlate細胞数1×105個mLに2mLずつ播種し、37°C、5CO2のインキュベーターにて80~90コンフルエントの状態に達するまで持続培養した。次いで、上記12wellPlateにおいて増殖因子を含有しない培地を変更し、本発明の製品試料1A、1B及びコントロール50vvのエタノール溶液をそれぞれ当該12wellPlaten2に添加した。同じ条件で3日間培養した。その後、上清の培養液を除去し、PBS2mLWellにて細胞を2回洗浄した後、1mLPBSを入れ、各々の細胞をセルハーベスターで試験管に回収した。それを、後のセラミド、グルコシルセラミド及び蛋白質の解析用の試料とした。セラミドグルコシルセラミド促進効果の確認前記回収された細胞を含むPBS液に、まず、メタノール:クロロホルム2.5ml:1.25ml加え攪拌し、次に、20分間振とうした。その後、遠心分離3000rpm、5分を行い、上清aと沈殿bを取り分けて、その上清aをセラミド量及びグルコシルセラミド量解析に供し、沈殿bを次のタンパク量解析に供した。1セラミド量及びグルコシルセラミド量の解析上清aにPBS:クロロホルム1.25ml:1.25mlを入れ、20分間振動し、遠心分離3000rpm、5分を行い、下相にあるクロロホルム層を単離、回収した。回収されたクロロホルム層を30°C、窒素雰囲気で乾固させた。乾燥品をクロロホルム-メタノール混合溶媒容量比=25ml:125ml100μlに溶解し、下記の薄層クロマトグラフィーによりセラミド及びグルコシルセラミドの定量に供した。セラミド又はグルコシルセラミド標準品と試料溶液とを乾燥のTLC板に入れ、展開溶媒であるクロロホルム:メタノール:酢酸=190:9:1vvvで薄層クロマトグラフィーを行った。展開剤がTCL板のトップに到達した後、ドライヤーで展開剤を乾燥した。次いで上記操作を1回繰り返した。その後、展開溶媒であるクロロホルム:メタノール:アセトン=76:20:4vvvで薄層クロマトグラフィーを行った。展開剤がTCL板のボタムからの2.5cmの位置に到達した後、展開を停止し、ドライヤーで展開剤を乾燥した。硫酸銅のリン酸溶液を噴霧し、乾燥して、TCL板を180°Cのヒータに置き7分間加熱して顕色させた。顕色されたTLC板をスキャンしてセラミド又はグルコシルセラミドの量それぞれをCer及びGlyCerとし、単位μgmLを解析した。2タンパク量の解析細胞中のセラミド量及びグルコシルセラミド量を表示するためにタンパク量の解析を行った。上記沈殿bに、900μlSDSドデシルスルホン酸ナトリウム溶液を入れ、混合し、60°Cで2時間加熱した後、タンパク質を変性分解させ、冷却した。次いで、100μl2NHClを加え、BCAKit法タンパク量の解析用のキットによりタンパク量Proと記する。μgmLを測定した。3解析の結果本発明品とコントロールの試料のそれぞれに対して、下式のように、CerProとGlyCerProを測定した。前記コントロールのCerProとGlyCerProのそれぞれを1とした場合の、本発明のCerProとGlyCerProの相対値を算出して表1に示した。また、前記コントロールのwellあたりのタンパク量を100とした場合の、本発明のwellあたりのタンパク量の相対値Proを算出して、それによりwellあたりのセラミド量及びグルコシルセラミド量コントロールに対する相対量を求めた。合わせて表1に示した。CerWellCerPro×ProGlyCerWellGlyCerPro×Proなお、CerPro又はCerWellが1コントロールよりも高い場合、当該試料がセラミド産生促進効果を有すると見なされる。また、GlyCerPro又はGlyCerWellが1コントロールよりも高い場合、当該試料がグルコシルセラミド産生促進効果を有すると見なされる。表1から明らかなように、本発明品1A、1Bは、セラミド及び又はグルコシルセラミド産生促進効果が確認された。なお、試料1A~1Bについて、それらを上記ヒトの活性化角化細胞を含む12wellPlateに加えることを行わない即ち、上記細胞培養を行わないままで、セラミド量及びグルコシルセラミド量の解析を行った。上記以外は、上記実施例11と同様にした。その結果は、試料1A~1Bの何れかにもセラミド又はグルコシルセラミドが存在しないことが確認された。これから、本発明の製造物自身には、セラミド又はグルコシルセラミドが存在しないが、本発明の製造物が、セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進の効果を有し、セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤として用いることができる。実施例2-1<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造発酵液の処理>まず、以下の方法で培地を調製した。大豆を水に入れ、12時間含浸し、大豆に水を十分に吸収させた。水を吸収した大豆を研削して粉砕し、濾過、滴り乾燥し、大豆残渣を得た。当該大豆残渣を、大豆残渣の濃度が10wv、ブドウ糖の濃度が1wvになるように、ブドウ糖及び水と混合して、培地とした。次いで、上記培地100mlを三角フラスコに入れ、Pichiaanomala江南大学工業微生物資源および情報センターCICIMに番号360-20-3として受託されている。を規定の量で接種し、30°Cで3日間培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、1mlの混合液を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤試料2Aとし、4°Cの冷蔵庫で保存して、細胞培養に供する。<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の評価>細胞培養まず、正常ヒトの活性化角化細胞CascadeCoLtdを初代細胞として、75cm2の培養フラスコ増殖因子を含有する培地2mlに、37°C、5CO2のインキュベーターにて80~90コンフルエントの状態に達するまで培養した。継代細胞を175cm2の培養フラスコに80~90コンフルエントの状態に達するまでに持続培養した。継代培養した後のヒト表皮角化細胞を12wellPlate細胞数1×105個mLに2mLずつ播種し、80~90コンフルエントの状態に達するまで持続培養した。次いで、上記12wellPlateにおいて増殖因子を含有しない培地を変更し、本発明の製造物試料2A及びコントロール50vvのエタノール溶液を当該12wellPlaten2に添加した。同じ条件で3日間培養した。その後、上清の培養液を除去し、PBS2mLWellにて細胞を2回洗浄した後、1mLPBSを入れ、各々の細胞をセルハーベスターで試験管に回収した。それを、後のセラミド、グルコシルセラミド及び蛋白質の解析用の試料とした。セラミドグルコシルセラミド促進効果の確認前記回収された細胞を含むPBS液に、まず、メタノール:クロロホルム2.5ml:1.25mlの溶媒を加え攪拌し、次に、20分間振動した。その後、遠心分離3000rpm、5分を行い、上清aと沈殿bを取り分けて、その上清aをセラミド量及びグルコシルセラミド量解析に供し、沈殿bを次のタンパク量解析に供した。1セラミド量及びグルコシルセラミド量の解析上清aにPBS:クロロホルム1.25ml:1.25mlの溶媒を入れ、20分間振動し、遠心分離3000rpm、5分を行い、下相にあるクロロホルム層を単離、回収した。回収されたクロロホルム層を30°C、窒素雰囲気で乾固させた。乾燥品をクロロホルム-メタノール混合溶媒容量比=25ml:125ml100μlに溶解し、下記の薄層クロマトグラフィーによりセラミド及びグルコシルセラミドの定量に供した。セラミド又はグルコシルセラミド標準品と試料溶液とを乾燥のTLC板に入れ、展開溶媒であるクロロホルム:メタノール:酢酸=190:9:1vvvで薄層クロマトグラフィーを行った。展開剤がTCL板のトップに到達した後、ドライヤーで展開剤を乾燥した。次いで上記操作を1回繰り返した。その後、展開溶媒であるクロロホルム:メタノール:アセトン=76:20:4vvvで薄層クロマトグラフィーを行った。展開剤がTCL板のボタムからの2.5cmの位置に到達した後、展開を停止し、ドライヤーで展開剤を乾燥した。硫酸銅のリン酸溶液を噴霧し、乾燥して、TCL板を180°Cのヒータに置き7分間加熱して顕色させた。顕色されたTLC板をスキャンしてセラミド又はグルコシルセラミドの量それぞれをCer及びGlyCerとし、単位μgmLを解析した。2タンパク量の解析細胞中のセラミド量及びグルコシルセラミド量を表示するためにタンパク量の解析を行った。上記沈殿bに、900μlSDSドデシルスルホン酸ナトリウム溶液を入れ、混合し、60°Cで2時間加熱した後、タンパク質を変性分解させ、冷却した。次いで、100μl2NHClを加え、BCAKit法タンパク量の解析用のキットによりタンパク量Proと記する。μgmLを測定した。3解析の結果本発明品とコントロールの試料のそれぞれに対して、下式のように、CerProとGlyCerProを測定した。前記コントロールのCerProとGlyCerProのそれぞれを1とした場合の、本発明のCerProとGlyCerProの相対値を算出して表2-1~表2-3に示した。また、前記コントロールのwellあたりのタンパク量を100とした場合の、本発明のwellあたりのタンパク量の相対値Proを算出して、それによりwellあたりのセラミドの量及びグルコシルセラミド量コントロールに対する相対量を求めた。合わせて表2に示した。CerWellCerPro×ProGlyCerWellGlyCerPro×Proなお、CerPro又はCerWellが1コントロールよりも高い場合、当該試料がセラミド産生促進効果を有すると見なされる。また、GlyCerPro又はGlyCerWellが1コントロールよりも高い場合、当該試料がグルコシルセラミド産生促進効果を有すると見なされる。表2-1~表2-3から明らかなように、本発明品2Aは、セラミド及びグルコシルセラミド産生促進効果が認められた。実施例2-2実施例2-1に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、PichiaanomalaをPichiaguilliermondii江南大学工業微生物資源および情報センターCICIMに番号422193として受託されている。に替え、また、大豆残渣の発酵後に得られた上清に2.5倍体積のEtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。乾燥の試料を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤2B、2Cとし、さらに、乾燥の試料2B、2Cを50vvEtOHで溶解し、それぞれ1vv及び01vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。上記以外は、実施例21と同様にして、試料2B、2Cのセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の効果を評価した。結果は表2-1~表2-3に示す。表2-1~表2-3から明らかなように、本発明品2B、2Cは、セラミド産生促進効果が確認された。実施例2-3実施例2-1に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、PichiaanomalaをPichianorvegensis江南大学工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMY0151として受託されている。に替えた以外、実施例2-1と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、1mlの混合液を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2Dとし、4°Cの冷蔵庫で保存して、細胞培養に供する。上記EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2E、2Fとし、さらに、試料2E、2Fをそれぞれ50vvEtOHで溶解し、1vv及び01vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例2-1と同様にして、試料2D、2E、2Fのセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表2-1~表2-3に示した。表2-1~表2-3から明らかなように、実施例2-3の試料2D、2E、2Fは、セラミド産生促進効果を示すことが確認された。実施例2-4実施例2-1に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Pichiaanomala番号360203をPichiaanomala江南大学工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMY0297として受託されている。に替えた以外、実施例2-1と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、1mlの混合液を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2Gとし、4°Cの冷蔵庫で保存して、細胞培養に供する。上記EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2Hとし、さらに、試料2Hを50vvEtOHで溶解し、1vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例2-1と同様にして、試料2G、2Hのセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表2-1~表2-3に示した。表2-1~表2-3から明らかなように、実施例2-4の試料2G、2Hは、セラミド及びグルコシルセラミド産生促進効果を示すことが確認された。実施例2-5実施例2-1に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Pichiaanomala番号360203をPichiaanomala江南大学工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMY0349として受託されている。に替えた以外、実施例2-1と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、1mlの混合液を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2Iとし、4°Cの冷蔵庫で保存して、細胞培養に供する。上記EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2J,2Kとし、さらに、試料2J,2Kをそれぞれ50vvEtOHで溶解し、1vv及び01vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例2-1と同様にして、試料2I、2J、2Kのセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表2-1~表2-3に示した。表2-1~表2-3から明らかなように、実施例2-5の試料2I、2J、2Kは、セラミド及び又はグルコシルセラミド産生促進効果を示すことが確認された。実施例2-6実施例2-1に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Pichiaanomala番号360203をPichiamembranifaciens江南大学工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMY0360として受託されている。に替えた以外、実施例2-1と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、1mlの混合液を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2Lとし、4°Cの冷蔵庫で保存して、細胞培養に供する。上記EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2M、2Nとし、さらに、試料2M、2Nをそれぞれ50vvEtOHで溶解し、1vv及び01vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例2-1と同様にして、試料2L、2M、2Nのセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表2-1~表2-3に示した。表2-1~表2-3から明らかなように、実施例2-6の試料2L、2M、2Nは、セラミド産生促進効果を示すことが確認された。実施例2-7実施例2-1に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Pichiaanomala番号360203をPichiaanomala江南大学工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMY0420として受託されている。に替えた以外、実施例2-1と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、1mlの混合液を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2Oとし、4°Cの冷蔵庫で保存して、細胞培養に供する。上記EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2P、2Qとし、さらに、試料2P、2Qをそれぞれ50vvEtOHで溶解し、1vv及び01vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例2-1と同様にして、試料2O、2P、2Qのセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表2-1~表2-3に示した。表2-1~表2-3から明らかなように、実施例2-7の試料2O、2P、2Qは、セラミド産生促進効果を示すことが確認された。実施例2-8実施例2-1に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Pichiaanomala番号360203をPichiaanomala江南大学工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMY0421として受託されている。に替えた以外、実施例2-1と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、1mlの混合液を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2Rとし、4°Cの冷蔵庫で保存して、細胞培養に供する。上記EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2S、2Tとし、さらに、試料2S、2Tをそれぞれ50vvEtOHで溶解し、1vv及び01vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例2-1と同様にして、試料2R、2S、2Tのセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表2-1~表2-3に示した。表2-1~表2-3から明らかなように、実施例2-8の試料2R、2S、2Tは、セラミド産生促進効果を示すことが確認された。実施例2-9実施例2-1に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Pichiaanomala番号360203をPichiaburtonii江南大学工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMY0424として受託されている。に替えた以外、実施例2-1と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、1mlの混合液を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2Uとし、4°Cの冷蔵庫で保存して、細胞培養に供する。上記EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2Vとし、さらに、試料2Vを50vvEtOHで溶解し、1vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例2-1と同様にして、試料2U、2Vのセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表2-1~表2-3に示した。表2-1~表2-3から明らかなように、実施例2-9の試料2U、2Vは、セラミド産生促進効果を示すことが確認された。実施例2-10実施例2に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Pichiaanomala番号360203をPichiaguilliermondii江南大学工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMY0440として受託されている。に替えた以外、実施例2-1と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、1mlの混合液を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2Wとし、4°Cの冷蔵庫で保存して、細胞培養に供する。実施例2-1と同様にして、試料2Wのセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表2-1~表2-3に示した。表2-1~表2-3から明らかなように、実施例2-10の試料2Wは、グルコシルセラミド産生促進効果を示すことが確認された。実施例2-11実施例2-1に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Pichiaanomala番号360203をPichiaguilliermondii江南大学工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMY0326として受託されている。に替えた以外、実施例2-1と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、1mlの混合液を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2Xとし、4°Cの冷蔵庫で保存して、細胞培養に供する。上記EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2Yとし、さらに、試料2Yを50vvEtOHで溶解し、0.1vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例2-1と同様にして、試料2X、2Yのセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表2-1~表2-3示した。表2-1~表2-3から明らかなように、実施例2-11の試料2X、2Yは、グルコシルセラミド産生促進効果を示すことが確認された。実施例2-12実施例2-1に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Pichiaanomala番号360203をPichiaguilliermondii江南大学工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMY0329として受託されている。に替えた以外、実施例21と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、1mlの混合液を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2Zとし、4°Cの冷蔵庫で保存して、細胞培養に供する。上記EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2aとし、さらに、試料2aを50vvEtOHで溶解し、1vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例2-1と同様にして、試料2Z、2aのセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表2-1~表2-3に示した。表2-1~表2-3から明らかなように、実施例2-12の試料2Z、2aは、セラミド及び又はグルコシルセラミド産生促進効果を示すことが確認された。実施例2-13実施例2-1に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Pichiaanomala番号360203をPichiaguilliermondii江南大学工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMY0414として受託されている。に替えた以外、実施例2-1と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、上記EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料2bとし、さらに、試料2bを50vvEtOHで溶解し、1vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例21と同様にして、試料2bのセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表2-1~表2-3に示した。表2-1~表2-3から明らかなように、実施例213の試料2bは、セラミド及びグルコシルセラミド産生促進効果を示すことが確認された。なお、試料2A~2Z及び2a、2bについて、それらを上記ヒトの活性化角化細胞を含む12wellPlateに加えることを行わない即ち、上記細胞培養を行わないままで、セラミド量及びグルコシルセラミド量の解析を行った。上記以外は、上記実施例21と同様にした。その結果は、試料2A~2Z及び2a、2bの何れかにもセラミド又はグルコシルセラミドが存在しないことが確認された。これから、本発明の製造物自身には、セラミド又はグルコシルセラミドが存在しないが、本発明の製造物が、セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進の効果を有し、セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤として用い得ることができる。実施例31セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造大豆残渣からセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を製造する微生物として、キャンディダジラノイデスCandidazeylanoides江南大学から購入され、中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに受託され、原始番号472201を使用した。YPD培地YeastExtractPeptoneDextroseMediumで30°C培養して得られたの上記菌株を、セラミド/グルコシルセラミド産生促進剤製造培地10wv大豆残渣、1wv葡萄糖100mLを含む300mL容三角フラスコに接種し、30°Cで72時間培養した。その中、大豆残渣は大豆を水に入れ、12時間含浸し、大豆に水を十分に吸収させて、水を吸収した大豆を研削して粉砕し、濾過、乾燥を経て調製した。得られた培養液中からセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を精製するために、3000rpm、10mins遠心分離で菌体を除き、回収した培養上清に対して、2.5倍体積の無水EtOHを加え、本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤含有の粗抽出物本発明品3A-1とした。さらに、その粗抽出物を、超音波処理装置Branson社製で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で40°C以下乾燥処理して一定の重さになった大豆残渣の発酵エキスを、本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤とした。さらに、その大豆残渣の発酵エキスを50vvEtOHで溶解し、1vvの濃度本発明品3A-2に調製後、4°Cで保存して、次のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進試験に供する。実施例32大豆残渣からセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を製造する微生物として、キャンディダジラノイデスCandidazeylanoides江南大学から購入され、中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに受託され、原始番号406201を使用し、実施例31と同様の方法で本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤含有の粗抽出物を得た本発明品3B-1。さらに、その粗抽出物を精製して得た大豆残渣の発酵エキスを、本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤とした。さらに、その大豆残渣の発酵エキスを50vvEtOHで溶解し、1vv本発明品3B-2及び01vv本発明品3B-3の濃度に調製後、4°Cで保存して、次のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進試験に供する。実施例33大豆残渣からセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を製造する微生物として、キャンディダパラプシロシスCandidaparapsilosis江南大学から購入され、中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに受託され、原始番号514203を使用し、実施例31と同様の方法で本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤含有の粗抽出物を得た本発明品3C-1。さらに、その粗抽出物を精製して得た大豆残渣の発酵エキスを、本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤とした。さらに、その大豆残渣の発酵エキスを50vvEtOHで溶解し、1vvの濃度本発明品3C-2に調製後、4°Cで保存して、次のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進試験に供する。実施例34大豆残渣からセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を製造する微生物として、キャンディダパラプシロシスCandidaparapsilosis江南大学から購入され、中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに受託され、原始番号525202を使用し、実施例31と同様の方法で大豆残渣の発酵エキスを、本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤とした。さらに、その大豆残渣の発酵エキスを50vvEtOHで溶解し、1vv本発明品3D-1及び01vv本発明品3D-2の濃度に調製後、4°Cで保存して、次のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進試験に供する。実施例35大豆残渣からセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を製造する微生物として、キャンディダメタプシローシスCandidametapsilosis江南大学から購入され、中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに受託され、原始番号510193を使用し、実施例31と同様の方法で本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤含有の粗抽出物を得た本発明品3E-1。さらに、その粗抽出物を精製して得た大豆残渣の発酵エキスを、本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤とした。さらに、その大豆残渣の発酵エキスを50vvEtOHで溶解し、1vv本発明品3E-2及び01vv本発明品3E-3の濃度に調製後、4°Cで保存して、次のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進試験に供する。実施例36大豆残渣からセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を製造する微生物として、キャンディダパラプシロシスCandidaparapsilosis江南大学から購入され、中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに受託され、委託番号CICIMY0314を使用し、実施例31と同様の方法で本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤含有の粗抽出物を得た本発明品3F1。さらに、その粗抽出物を精製して得た大豆残渣の発酵エキスを、本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤とした。さらに、その大豆残渣の発酵エキスを50vvEtOHで溶解し、1vv本発明品3F2及び01vv本発明品3F3の濃度に調製後、4°Cで保存して、次のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進試験に供する。実施例37大豆残渣からセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を製造する微生物として、キャンディダパラプシロシスCandidaparapsilosis江南大学から購入され、中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに受託され、委託番号CICIMY0322を使用し、実施例31と同様の方法で本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤含有の粗抽出物を得た本発明品3G1。さらに、その粗抽出物を精製して得た大豆残渣の発酵エキスを、本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤とした。さらに、その大豆残渣の発酵エキスを50vvEtOHで溶解し、1vv本発明品3G2及び01vv本発明品3G3の濃度に調製後、4°Cで保存して、次のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進試験に供する。実施例38大豆残渣からセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を製造する微生物として、キャンディダボイディニCandidaboidinii江南大学から購入され、中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに受託され、委託番号CICIMY0366を使用し、実施例31と同様の方法で本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤含有の粗抽出物を得た本発明品3H1。さらに、その粗抽出物を精製して得た大豆残渣の発酵エキスを、本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤とした。さらに、その大豆残渣の発酵エキスを50vvEtOHで溶解し、1vvの濃度本発明品3H2に調製後、4°Cで保存して、次のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進試験に供する。実施例39大豆残渣からセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を製造する微生物として、キャンディダメタプシローシスCandidametapsilosis江南大学から購入され、中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに受託され、委託番号CICIMY0439を使用し、実施例31と同様の方法で大豆残渣の発酵エキスを得た。さらに、その大豆残渣の発酵エキスを50vvEtOHで溶解し、1vv本発明品3I-1及び01vv本発明品3I-2の濃度に調製後、4°Cで保存して、次のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進試験に供する。実施例310大豆残渣からセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を製造する微生物として、キャンディダパラプシロシスCandidaparapsilosis江南大学から購入され、中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに受託され、委託番号CICIMY0443を使用し、実施例31と同様の方法で大豆残渣の発酵エキスを得た。さらに、その大豆残渣の発酵エキスを50vvEtOHで溶解し、1vv本発明品3J-1及び01vv本発明品3J-2の濃度に調製後、4°Cで保存して、次のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進試験に供する。実施例311大豆残渣からセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を製造する微生物として、キャンディダマグノリアエCandidamagnoliae江南大学から購入され、中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに受託され、委託番号CICIMY0184を使用し、実施例31と同様の方法で大豆残渣の発酵エキスを得た。さらに、その大豆残渣の発酵エキスを50vvEtOHで溶解し、1vv本発明品3K-1及び01vv本発明品3K-2の濃度に調製後、4°Cで保存して、次のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進試験に供する。実施例312大豆残渣からセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を製造する微生物として、キャンディダマルトーサCandidamaltosa江南大学から購入され、中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに受託され、委託番号CICIMY0207を使用し、実施例31と同様の方法で大豆残渣の発酵エキスを得た。さらに、その大豆残渣の発酵エキスを50vvEtOHで溶解し、01vv本発明品3L-1の濃度に調製後、4°Cで保存して、次のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進試験に供する。実施例313大豆残渣からセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を製造する微生物として、キャンディダステアトリチカCandidasteatolytica江南大学から購入され、中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに受託され、委託番号CICIMY0221を使用し、実施例31と同様の方法で本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤含有の粗抽出物を得た本発明品3M1。さらに、その粗抽出物を精製して得た大豆残渣の発酵エキスを、本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤とし、4°Cで保存して、次のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進試験に供する。実施例314大豆残渣からセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を製造する微生物として、キャンディダブチリCandidabutyri江南大学から購入され、中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに受託され、委託番号CICIMY0233を使用し、実施例31と同様の方法で大豆残渣の発酵エキスを得た。さらに、その大豆残渣の発酵エキスを50vvEtOHで溶解し、1vv本発明品3N-1の濃度に調製後、4°Cで保存して、次のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進試験に供する。実施例315大豆残渣からセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を製造する微生物として、キャンディダラギーCandidarhagii江南大学から購入され、中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに受託され、委託番号CICIMY0248を使用し、実施例31と同様の方法で本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤含有の粗抽出物を得た本発明品3O-1。さらに、その粗抽出物を精製して得た大豆残渣の発酵エキスを、本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤とした。さらに、その大豆残渣の発酵エキスを50vvEtOHで溶解し、1vv本発明品3O-2及び01vv本発明品3O-3の濃度に調製後、4°Cで保存して、次のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進試験に供する。実施例316大豆残渣からセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を製造する微生物として、キャンディダジラノイデスCandidazeylanoides江南大学から購入され、中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに受託され、委託番号CICIMY0428を使用し、実施例31と同様の方法で本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤含有の粗抽出物を得た本発明品3P-1。さらに、その粗抽出物を精製して得た大豆残渣の発酵エキスを、本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤とした。さらに、その大豆残渣の発酵エキスを50vvEtOHで溶解し、1vv本発明品3P-2の濃度に調製後、4°Cで保存して、次のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進試験に供する。実施例317大豆残渣からセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を製造する微生物として、キャンディダパラプシロシスCandidaparapsilosis江南大学から購入され、中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに受託され、委託番号CICIMY0325を使用し、実施例31と同様の方法で本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤含有の粗抽出物を得た本発明品3Q-1。さらに、その粗抽出物を精製して得た大豆残渣の発酵エキスを、本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤とした。さらに、その大豆残渣の発酵エキスを50vvEtOHで溶解し、1vv本発明品3Q-2の濃度に調製後、4°Cで保存して、次のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進試験に供する。セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進試験<角化細胞Keratinocytesの培養>まず、正常ヒトの活性化角化細胞CascadeCoLtdを初代細胞として、75cm2の培養フラスコ増殖因子を含有する培地2mlに、37°C、5CO2のインキュベーターにて80~90コンフルエントの状態に達するまで培養した。継代細胞を175cm2の培養フラスコに80~90コンフルエントの状態に達するまでに持続培養した。さらに12wellPlate細胞数1×105個mLに2mLずつ播種し、37°C、5CO2のインキュベーターにて80~90コンフルエントの状態に達するまで持続培養した。次いで、上記12wellPlateにおいて増殖因子を含有しない培地を変更して、それぞれ上述実施例31~317で得たの大豆残渣の発酵エキスのエタノール溶液を20μlWellずつ添加した。なお、コントロールとしてエタノールのみセラミド及びグルコシルセラミド産生促進剤無添加を添加した。同じ条件で72時間培養した。72時間培養した後、上清の培養液を除去し、PBS2mLWellにて細胞を2回洗浄した後、1mLPBSを入れ、各々細胞をセルハーベスターで試験管に回収した。それを、後のセラミド、グルコシルセラミド及び蛋白質の解析用の試料とした。<脂質抽出>脂質抽出は、BlighDyer法を用いて行った。具体的には、前記回収した細胞を含むPBS液に、まず、メタノール:クロロホルム2.5mL:1.25mL加え攪拌し、次に、20分間振とう混合した。その後、遠心分離3000rpm、5分を行い、上清Aと沈殿Bを取り分けて、その上清Aをセラミド量及びグルコシルセラミド量解析に供し、沈殿Bを次のタンパク量解析に供する。<タンパク量解析>細胞中のセラミド量及びグルコシルセラミド量を表示するためにタンパク量解析を行った。回収した沈殿Bに、900μlSDS溶液を入れ、混合し、60°Cの水浴で2時間加熱した後、タンパク質を変性分解させるように冷却した。次いで、100μl2NHClを加え、BCAKit法によりタンパク量μgmLを測定した。<セラミド量及びグルコシルセラミド量の解析>残った上清AにPBS:クロロホルム1.25mL:1.25mLを入れ、20分間振動混合し、遠心分離3000rpm、5分を行い、下相にあるクロロホルム層を単離、回収した。回収したクロロホルム層を30°C、窒素還流下で乾固させて乾燥品を得た。乾燥品をクロロホルム-メタノール混合溶媒容量比=25ml:125ml100μlに溶解し、下記の薄層クロマトグラフィーによりセラミド及びグルコシルセラミドの定量それぞれをCer及びGlyCerとし、単位μgmLを行った。乾燥のTLC板を利用して、展開溶媒であるクロロホルム:メタノール:酢酸=190:9:1vvvで薄層クロマトグラフィーを行った。展開剤がTCL板のトップに到達した後、ドライヤーで展開剤を乾燥した。次いで上記操作を1回繰り返した。その後、展開溶媒であるクロロホルム:メタノール:アセトン=76:20:4vvvで薄層クロマトグラフィーを行った。展開剤がTCL板のボタムからの2.5cmの位置に到達した後、展開を停止し、ドライヤーで展開剤を乾燥した。硫酸銅のリン酸溶液を噴霧し、乾燥して、TCL板を180°Cのヒータに置き7分間加熱して顕色させた。顕色されたTLC板をスキャンしてセラミド又はグルコシルセラミドの量を解析した。その後、下式1より、得られた値を各々のタンパク量で割り、CerProとGlyCerProが得られる。前記コントロールのそれぞれCerProとGlyCerProを1として、本発明のCerProとGlyCerProの相対値を算出した。また、前記コントロールのwellあたりのタンパク量を100として、wellあたりのセラミドの量及びグルコシルセラミド量それぞれをCerWell及びGlyCerWellとし、コントロールに対する相対量を求めた。合わせて表3-1~表3-2に示した。表3-1~表3-2に示すように、実施例31、実施例36、37及び実施例317で得た本発明品はセラミド産生促進効果及びグルコシルセラミド産生促進効果を示した。また、実施例32、実施例39~313及び実施例315で得た本発明品は著しいグルコシルセラミド産生促進効果を示した。実施例33~35、実施例38、実施例314及び実施例316で得た本発明品は著しいセラミド産生促進効果を示した。従って、本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤は、そのセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進効果が認められた。セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤にセラミド及び/又はグルコシルセラミドが存在しないことを証明する試験上記細胞培養を行わなく、TLC法のみで上記実施例31~317で得たのセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を解析して、その結果として、本発明品の中にはセラミド/グルコシルセラミドは存在しないことを示した。このことから、本発明品自体には、セラミド又はグルコシルセラミドが存在しないが、セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進効果を有し、さらに、セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤として用い得ることが確認された。実施例41セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造大豆残渣からセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を製造する微生物として、デバリオマイセスハンセニDebaryomyceshansenii江南大学から購入され、中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに受託され、原始番号476201を使用した。YPD培地YeastExtractPeptoneDextroseMediumで30°C培養して得られたの上記菌株を、セラミド/グルコシルセラミド産生促進剤製造培地10wv大豆残渣、1wv葡萄糖100mLを含む300mL容三角フラスコに接種し、30°Cで72時間培養した。その中、大豆残渣は大豆を水に入れ、12時間含浸し、大豆に水を十分に吸収させて、水を吸収した大豆を研削して粉砕し、濾過、乾燥を経て調製した。得られた培養液中からセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を精製するために、3000rpm、10mins遠心分離で菌体を除き、回収した培養上清に対して、2.5倍体積の無水EtOHを加え、さらに、超音波処理装置Branson社製で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で40°C以下乾燥処理して一定の重さになった大豆残渣の発酵エキスを、本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤とした。さらに、その大豆残渣の発酵エキスを50vvEtOHで溶解し、1の濃度に調製後、4°Cで保存して、次のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進試験に供する。実施例42大豆残渣からセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を製造する微生物として、デバリオマイセスハンセニDebaryomyceshansenii江南大学から購入され、中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに受託され、原始番号514204を使用し、実施例41と同様の方法で得た大豆残渣の発酵エキスを、本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤とした。さらに、その大豆残渣の発酵エキスを50vvEtOHで溶解し、1の濃度に調製後、4°Cで保存して、次のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進試験に供する。実施例43大豆残渣からセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を製造する微生物として、デバリオマイセスハンセニDebaryomyceshansenii江南大学から購入され、中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに受託され、受託番号CICIMY0356を使用し、実施例41と同様の方法で得た大豆残渣の発酵エキスを、本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤とした。さらに、その大豆残渣の発酵エキスを50vvEtOHで溶解し、1の濃度に調製後、4°Cで保存して、次のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進試験に供する。実施例44大豆残渣からセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を製造する微生物として、デバリオマイセスハンセニDebaryomyceshansenii江南大学から購入され、中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに受託され、受託番号CICIMY0286を使用し、実施例41と同様の方法で得た大豆残渣の発酵エキスを、本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤とした。さらに、その大豆残渣の発酵エキスを50vvEtOHで溶解し、1の濃度に調製後、4°Cで保存して、次のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進試験に供する。実施例45大豆残渣からセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を製造する微生物として、デバリオマイセスハンセニDebaryomyceshansenii江南大学から購入され、中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに受託され、受託番号CICIMY0287を使用し、実施例41と同様の方法で得た大豆残渣の発酵エキスを、本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤とした。さらに、その大豆残渣の発酵エキスを50vvEtOHで溶解し、1の濃度に調製後、4°Cで保存して、次のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進試験に供する。実施例46大豆残渣からセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を製造する微生物として、デバリオマイセスハンセニDebaryomyceshansenii江南大学から購入され、中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに受託され、受託番号CICIMY0289を使用し、実施例41と同様の方法で得た大豆残渣の発酵エキスを、本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤とした。さらに、その大豆残渣の発酵エキスを50vvEtOHで溶解し、1の濃度に調製後、4°Cで保存して、次のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進試験に供する。実施例47大豆残渣からセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を製造する微生物として、デバリオマイセスハンセニDebaryomyceshansenii江南大学から購入され、中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに受託され、受託番号CICIMY0290を使用し、実施例41と同様の方法で得た大豆残渣の発酵エキスを、本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤とした。さらに、その大豆残渣の発酵エキスを50vvEtOHで溶解し、1の濃度に調製後、4°Cで保存して、次のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進試験に供する。実施例48大豆残渣からセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を製造する微生物として、デバリオマイセスバンリジエDebaryomycesvanrijiae江南大学から購入され、中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに受託され、受託番号CICIMY0198を使用し、実施例41と同様の方法で得た大豆残渣の発酵エキスを、本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤とした。さらに、その大豆残渣の発酵エキスを50vvEtOHで溶解し、0.1の濃度に調製後、4°Cで保存して、次のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進試験に供する。実施例49大豆残渣からセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を製造する微生物として、デバリオマイセスハンセニDebaryomyceshansenii江南大学から購入され、中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに受託され、受託番号CICIMY0351を使用し、実施例41と同様の方法で得た大豆残渣の発酵エキスを、本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤とした。さらに、その大豆残渣の発酵エキスを50vvEtOHで溶解し、1の濃度に調製後、4°Cで保存して、次のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進試験に供する。セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進試験<角化細胞Keratinocytes培養>まず、正常ヒトの活性化角化細胞CascadeCoLtdを初代細胞として、75cm2の培養フラスコ増殖因子を含有する培地2mlに、37°C、5CO2のインキュベーターにて80~90コンフルエントの状態に達するまで培養した。継代細胞を175cm2の培養フラスコに80~90コンフルエントの状態に達するまでに持続培養した。さらに12wellPlate細胞数1×105個mLに2mLずつ播種し、37°C、5CO2のインキュベーターにて80~90コンフルエントの状態に達するまで持続培養した。次いで、上記12wellPlateにおいて増殖因子を含有しない培地を変更して、それぞれ上述実施例41~49の1wv含有量の大豆残渣の発酵エキスのエタノール溶液を20μlWellずつ添加した。なお、コントロールとしてエタノールのみセラミド及びグルコシルセラミド産生促進剤無添加を添加した。同じ条件で72時間培養した。72時間培養した後、上清の培養液を除去し、PBS2mLWellにて細胞を2回洗浄した後、1mLPBSを入れ、各々の細胞をセルハーベスターで試験管に回収した。それを、後のセラミド、グルコシルセラミド及び蛋白質の解析用の試料とした。<脂質抽出>脂質抽出は、BlighDyer法を用いて行った。具体的には、前記回収した細胞を含むPBS液に、まず、メタノール:クロロホルム2.5mL:1.25mL加え攪拌し、次に、20分間振とうした。その後、遠心分離3000rpm、5分を行い、上清Aと沈殿Bを取り分けて、その上清Aをセラミド量及びグルコシルセラミド量解析に供し、沈殿Bを次のタンパク量解析に供する。<タンパク量解析>細胞中のセラミド量及びグルコシルセラミド量を表示するためにタンパク量解析を行った。回収した沈殿Bに、900μlSDS溶液を入れ、混合し、60°Cで2時間加熱した後、タンパク質を変性分解させるように冷却した。次いで、100μl2NHClを加え、BCAKit法によりタンパク量μgmLを測定した。<セラミド量及びグルコシルセラミド量の解析>残った上清AにPBS:クロロホルム1.25mL:1.25mLを入れ、20分間振動し、遠心分離3000rpm、5分を行い、下相にあるクロロホルム層を単離、回収した。回収したクロロホルム層を30°C、窒素還流下で乾固させて乾燥品を得た。乾燥品をクロロホルム-メタノール混合溶媒容量比=25ml:125ml100μlに溶解し、下記の薄層クロマトグラフィーによりセラミド及びグルコシルセラミドの定量それぞれをCer及びGlyCerとし、単位μgmLを行った。乾燥のTLC板を利用して、展開溶媒であるクロロホルム:メタノール:酢酸=190:9:1vvvで薄層クロマトグラフィーを行った。展開剤がTCL板のトップに到達した後、ドライヤーで展開剤を乾燥した。次いで上記操作を1回繰り返した。その後、展開溶媒であるクロロホルム:メタノール:アセトン=76:20:4vvvで薄層クロマトグラフィーを行った。展開剤がTCL板のボタムからの2.5cmの位置に到達した後、展開を停止し、ドライヤーで展開剤を乾燥した。硫酸銅のリン酸溶液を噴霧し、乾燥して、TCL板を180°Cのヒータに置き7分間加熱して顕色させた。顕色されたTLC板をスキャンしてセラミド又はグルコシルセラミドの量を解析した。その後、下式1より、得られた値を各々のタンパク量で割り、CerProとGlyCerProが得られる。前記コントロールのそれぞれCerProとGlyCerProを1として、本発明のCerProとGlyCerProの相対値を算出した。また、前記コントロールのwellあたりのタンパク量を100として、wellあたりのセラミドの量及びグルコシルセラミド量それぞれをCerWell及びGlyCerWellとし、コントロールに対する相対量を求めた。合わせて表4に示した。表4に示すように、実施例41及び実施例49で得た本発明品はセラミド産生促進効果及びグルコシルセラミド産生促進効果を示した。また、実施例42及び実施例44~47で得た本発明品は著しいセラミド産生促進効果を示したが、実施例43及び実施例48で得た本発明品は著しいグルコシルセラミド産生促進効果を示した。従って、本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤は、セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進効果が認められた。セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤にセラミド及び/又はグルコシルセラミドが存在しないことを証明する試験上記細胞培養を行わなく、TLC法のみで上記実施例41~49で得たのセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を解析して、その結果として、本発明品の中にはセラミド/グルコシルセラミドは存在しないことを示した。このことから、本発明品自体には、セラミド又はグルコシルセラミドが存在しないが、セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進効果を有し、さらに、セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤として用い得ることが確認された。実施例51<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造発酵液の処理>まず、以下の方法で培地を調製した。大豆を水に入れ、12時間含浸し、大豆に水を十分に吸収させた。水を吸収した大豆を研削して粉砕し、濾過、滴り乾燥し、大豆残渣を得た。当該大豆残渣を、大豆残渣の濃度が10wv、ブドウ糖の濃度が1wvになるように、ブドウ糖及び水と混合して、培地とした。次いで、上記培地100mlを三角フラスコに入れ、Cryptococcuslaurentii江南大学工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMY0232として受託されている。を規定の量で接種し、30°Cで3日間培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、1mlの混合液を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料5Aとし、4°Cの冷蔵庫で保存して、細胞培養に供する。当該EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料5B、5Cとし、さらに、試料5B、5Cをそれぞれ50vvEtOHで溶解し、1vv及び01vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の評価>細胞培養まず、正常ヒトの活性化角化細胞CascadeCoLtdを初代細胞として、75cm2の培養フラスコ増殖因子を含有する培地2mlに、37°C、5CO2のインキュベーターにて80~90コンフルエントの状態に達するまで培養した。継代細胞を175cm2の培養フラスコに80~90コンフルエントの状態に達するまでに持続培養した。継代培養した後のヒト表皮角化細胞を12wellPlate細胞数1×105個mLに2mLずつ播種し、37°C、5CO2のインキュベーターにて80~90コンフルエントの状態に達するまで持続培養した。次いで、上記12wellPlateにおいて増殖因子を含有しない培地を変更し、本発明の製品試料5A、5B、5C及びコントロール50vvのエタノール溶液をそれぞれ当該12wellPlaten2に添加した。同じ条件で3日間培養した。その後、上清の培養液を除去し、PBS2mLWellにて細胞を2回洗浄した後、1mLPBSを入れ、各々の細胞をセルハーベスターで試験管に回収した。それを、後のセラミド、グルコシルセラミド及び蛋白質の解析用の試料とした。セラミドグルコシルセラミド促進効果の確認前記回収された細胞を含むPBS液に、まず、メタノール:クロロホルム2.5ml:1.25ml加え攪拌し、次に、20分間振とうした。その後、遠心分離3000rpm、5分を行い、上清aと沈殿bを取り分けて、その上清aをセラミド量及びグルコシルセラミド量解析に供し、沈殿bを次のタンパク量解析に供した。1セラミド量及びグルコシルセラミド量の解析上清aにPBS:クロロホルム1.25ml:1.25mlを入れ、20分間振動し、遠心分離3000rpm、5分を行い、下相にあるクロロホルム層を単離、回収した。回収されたクロロホルム層を30°C、窒素雰囲気で乾固させた。乾燥品をクロロホルム-メタノール混合溶媒容量比=25ml:125ml100μlに溶解し、下記の薄層クロマトグラフィーによりセラミド及びグルコシルセラミドの定量に供した。セラミド又はグルコシルセラミド標準品と試料溶液とを乾燥のTLC板に入れ、展開溶媒であるクロロホルム:メタノール:酢酸=190:9:1vvvで薄層クロマトグラフィーを行った。展開剤がTCL板のトップに到達した後、ドライヤーで展開剤を乾燥した。次いで上記操作を1回繰り返した。その後、展開溶媒であるクロロホルム:メタノール:アセトン=76:20:4vvvで薄層クロマトグラフィーを行った。展開剤がTCL板のボタムからの2.5cmの位置に到達した後、展開を停止し、ドライヤーで展開剤を乾燥した。硫酸銅のリン酸溶液を噴霧し、乾燥して、TCL板を180°Cのヒータに置き7分間加熱して顕色させた。顕色されたTLC板をスキャンしてセラミド又はグルコシルセラミドの量それぞれをCer及びGlyCerとし、単位μgmLを解析した。2タンパク量の解析細胞中のセラミド量及びグルコシルセラミド量を表示するためにタンパク量の解析を行った。上記沈殿bに、900μlSDSドデシルスルホン酸ナトリウム溶液を入れ、混合し、60°Cで2時間加熱した後、タンパク質を変性分解させ、冷却した。次いで、100μl2NHClを加え、BCAKit法タンパク量の解析用のキットによりタンパク量Proと記する。μgmLを測定した。3解析の結果本発明品とコントロールの試料のそれぞれに対して、下式のように、CerProとGlyCerProを測定した。前記コントロールのCerProとGlyCerProのそれぞれを1とした場合の、本発明のCerProとGlyCerProの相対値を算出して表5に示した。また、前記コントロールのwellあたりのタンパク量を100とした場合の、本発明のwellあたりのタンパク量の相対値Proを算出して、それによりwellあたりのセラミドの量及びグルコシルセラミド量コントロールに対する相対量を求めた。合わせて表5に示した。CerWellCerPro×ProGlyCerWellGlyCerPro×Proなお、CerPro又はCerWellが1コントロールよりも高い場合、当該試料がセラミド産生促進効果を有すると見なされる。また、GlyCerPro又はGlyCerWellが1コントロールよりも高い場合、当該試料がグルコシルセラミド産生促進効果を有すると見なされる。表5から明らかなように、本発明品5A、5B、5Cは、セラミド産生促進効果が確認された。実施例52実施例51に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Cryptococcuslaurentii番号CICIMY0232をCryptococcushungaricus江南大学工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMY0203として受託されている。に替えた以外、実施例51と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、1mlの混合液を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料5Dとし、4°Cの冷蔵庫で保存して、細胞培養に供する。上記EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料5E、5Fとし、さらに、試料5E、5Fをそれぞれ50vvEtOHで溶解し、1vv及び01vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例51と同様にして、試料5D、5E、5Fのセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表5に示した。表5から明らかなように、実施例52の試料5D、5E、5Fは、グルコシルセラミド産生促進効果を示すことが確認された。実施例53実施例51に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Cryptococcuslaurentii番号CICIMY0232をCryptococcuslaurentii江南大学工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMY0218として受託されている。に替えた以外、実施例51と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、1mlの混合液を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料5Gとし、4°Cの冷蔵庫で保存して、細胞培養に供する。上記EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料5Hとし、さらに、試料Hを50vvEtOHで溶解し、1vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例51と同様にして、試料5G、5Hのセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表5に示した。表5から明らかなように、実施例53の試料5G、5Hは、グルコシルセラミド産生促進効果を示すことが確認された。実施例54実施例51に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Cryptococcuslaurentii番号CICIMY0232をCryptococcushungaricus江南大学工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMY0219として受託されている。に替えた以外、実施例51と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、1mlの混合液を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料5Iとし、4°Cの冷蔵庫で保存して、細胞培養に供する。上記EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料5Jとし、さらに、試料5Jを50vvEtOHで溶解し、1vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例51と同様にして、試料5I、5Jのセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表5に示した。表5から明らかなように、実施例54の試料5I、5Jは、グルコシルセラミド産生促進効果を示すことが確認された。なお、試料5A~5Jについて、それらを上記ヒトの活性化角化細胞を含む12wellPlateに加えることを行わない即ち、上記細胞培養を行わないままで、セラミド量及びグルコシルセラミド量の解析を行った。上記以外は、上記実施例51と同様にした。その結果は、試料5A~5Jの何れかにもセラミド又はグルコシルセラミドが存在しないことが確認された。これから、本発明の製品自身には、セラミド又はグルコシルセラミドが存在しないが、本発明の製品が、セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進の効果を有し、セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤として用い得ることが分かる。実施例61セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造大豆残渣からセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を製造する微生物として、ハンセヌラポリモルファHansenulapolymorpha江南大学から購入され、中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに受託され、受託番号CICIMY0234を使用した。YPD培地YeastExtractPeptoneDextroseMediumで30°C培養して得られたの上記菌株を、セラミド/グルコシルセラミド産生促進剤製造培地10wv大豆残渣、1wv葡萄糖100mLを含む300mL容三角フラスコに接種し、30°Cで72時間培養した。その中、大豆残渣は大豆を水に入れ、12時間含浸し、大豆に水を十分に吸収させて、水を吸収した大豆を研削して粉砕し、濾過、乾燥を経て調製した。得られた培養液中からセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を精製するために、3000rpm、10mins遠心分離で菌体を除き、回収した培養上清に対して、2.5倍体積の無水EtOHを加え、さらに、超音波処理装置Branson社製で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で40°C以下乾燥処理して一定の重さになった大豆残渣の発酵エキスを、本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤とした。さらに、その大豆残渣の発酵エキスを50vvEtOHで溶解し、01本発明品6A-1の濃度に調製後、4°Cで保存して、次のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進試験に供する。実施例62大豆残渣からセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を製造する微生物として、ハンセヌラポリモルファHansenulapolymorpha江南大学から購入され、中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに受託され、委託番号CICIMY0205を使用して、実施例61と同様の方法で大豆残渣の発酵エキスを得て、本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤本発明品6B-1とし、4°Cで保存して、次のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進試験に供する。実施例63大豆残渣からセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を製造する微生物として、ハンセヌラポリモルファHansenulapolymorpha江南大学から購入され、中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに受託され、委託番号CICIMY0257を使用して、実施例61と同様の方法で大豆残渣の発酵エキスを得て、本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤とした。さらに、その大豆残渣の発酵エキスを50vvEtOHで溶解し、0.1vvの濃度本発明品6C1に調製後、4°Cで保存して、次のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進試験に供する。実施例64大豆残渣からセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を製造する微生物として、ハンセヌラポリモルファHansenulapolymorpha江南大学から購入され、中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに受託され、委託番号CICIMY0122を使用して、実施例61と同様の方法で大豆残渣の発酵エキスを得て、本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤本発明品6D1とした。さらに、その大豆残渣の発酵エキスを50vvEtOHで溶解し、1vv本発明品6D-2及び01vv本発明品6D-3に調製後、4°Cで保存して、次のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進試験に供する。実施例65大豆残渣からセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を製造する微生物として、ハンセヌラポリモルファHansenulapolymorpha江南大学から購入され、中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに受託され、委託番号CICIMY0135を使用して、実施例61と同様の方法で大豆残渣の発酵エキスを得て、本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤本発明品6E-1とし、4°Cで保存して、次のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進試験に供する。実施例66大豆残渣からセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を製造する微生物として、ハンセヌラシフェリイHansenulaciferrii江南大学から購入され、中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに受託され、委託番号CICIMY0150を使用して、実施例61と同様の方法で大豆残渣の発酵エキスを得て、本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤とした。さらに、その大豆残渣の発酵エキスを50vvEtOHで溶解し、1vvの濃度本発明品6F1に調製後、4°Cで保存して、次のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進試験に供する。実施例67大豆残渣からセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を製造する微生物として、ハンセヌラポリモルファHansenulapolymorpha江南大学から購入され、中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに受託され、委託番号CICIMY0197を使用して、実施例61と同様の方法で大豆残渣の発酵エキスを得て、本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤本発明品6G1とした。さらに、その大豆残渣の発酵エキスを50vvEtOHで溶解し、1vv本発明品6G-2及び01vv本発明品6G-3に調製後、4°Cで保存して、次のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進試験に供する。セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進試験<角化細胞Keratinocytes培養>まず、正常ヒトの活性化角化細胞CascadeCoLtdを初代細胞として、75cm2の培養フラスコ増殖因子を含有する培地2mlに、37°C、5CO2のインキュベーターにて80~90コンフルエントの状態に達するまで培養した。継代細胞を175cm2の培養フラスコに80~90コンフルエントの状態に達するまでに持続培養した。さらに12wellPlate細胞数1×105個mLに2mLずつ播種し、37°C、5CO2のインキュベーターにて80~90コンフルエントの状態に達するまで持続培養した。次いで、上記12wellPlateにおいて増殖因子を含有しない培地を変更して、それぞれ上述実施例61~67で得たの大豆残渣の発酵エキスのエタノール溶液を20μlWellずつ添加した。なお、コントロールとしてエタノールのみセラミド及びグルコシルセラミド産生促進剤無添加を添加した。同じ条件で72時間培養した。72時間培養した後、上清の培養液を除去し、PBS2mLWellにて細胞を2回洗浄した後、1mLPBSを入れ、各々の細胞をセルハーベスターで試験管に回収した。それを、後のセラミド、グルコシルセラミド及び蛋白質の解析用の試料とした。<脂質抽出>脂質抽出は、BlighDyer法を用いて行った。具体的には、前記回収した細胞を含むPBS液に、まず、メタノール:クロロホルム2.5mL:1.25mL加え攪拌し、次に、20分間振とうした。その後、遠心分離3000rpm、5分を行い、上清Aと沈殿Bを取り分けて、その上清Aをセラミド量及びグルコシルセラミド量解析に供し、沈殿Bを次のタンパク量解析に供する。<タンパク量解析>細胞中のセラミド量及びグルコシルセラミド量を表示するためにタンパク量解析を行った。回収した沈殿Bに、900μlSDS溶液を入れ、混合し、60°Cで2時間加熱した後、タンパク質を変性分解させるように冷却した。次いで、100μl2NHClを加え、BCAKit法によりタンパク量μgmLを測定した。<セラミド量及びグルコシルセラミド量の解析>残った上清AにPBS:クロロホルム1.25mL:1.25mLを入れ、20分間振動し、遠心分離3000rpm、5分を行い、下相にあるクロロホルム層を単離、回収した。回収したクロロホルム層を30°C、窒素還流下で乾固させて乾燥品を得た。乾燥品をクロロホルム-メタノール混合溶媒容量比=25ml:125ml100μlに溶解し、下記の薄層クロマトグラフィーによりセラミド及びグルコシルセラミドの定量それぞれをCer及びGlyCerとし、単位μgmLを行った。乾燥のTLC板を利用して、展開溶媒であるクロロホルム:メタノール:酢酸=190:9:1vvvで薄層クロマトグラフィーを行った。展開剤がTCL板のトップに到達した後、ドライヤーで展開剤を乾燥した。次いで上記操作を1回繰り返した。その後、展開溶媒であるクロロホルム:メタノール:アセトン=76:20:4vvvで薄層クロマトグラフィーを行った。展開剤がTCL板のボタムからの2.5cmの位置に到達した後、展開を停止し、ドライヤーで展開剤を乾燥した。硫酸銅のリン酸溶液を噴霧し、乾燥して、TCL板を180°Cのヒータに置き7分間加熱して顕色させた。顕色されたTLC板をスキャンしてセラミド又はグルコシルセラミドの量を解析した。その後、下式1より、得られた値を各々のタンパク量で割り、CerProとGlyCerProが得られる。前記コントロールのそれぞれCerProとGlyCerProを1として、本発明のCerProとGlyCerProの相対値を算出した。また、前記コントロールのwellあたりのタンパク量を100として、wellあたりのセラミドの量及びグルコシルセラミド量それぞれをCerWell及びGlyCerWellとし、コントロールに対する相対量を求めた。合わせて表6に示した。表6に示すように、実施例62で得た本発明品はセラミド産生促進効果及びグルコシルセラミド産生促進効果を示した。また、実施例61、実施例63及び実施例66で得た本発明品は著しいセラミド産生促進効果を示したが、実施例64及び実施例67で得た本発明品は著しいグルコシルセラミド産生促進効果を示した。従って、本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤は、セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進効果が認められた。セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤にセラミド及び/又はグルコシルセラミドが存在しないことを証明する試験上記細胞培養を行わなく、TLC法のみで上記実施例61~67で得たのセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を解析して、その結果として、本発明品の中にはセラミド/グルコシルセラミドは存在しないことを示した。このことから、本発明品自体には、セラミド又はグルコシルセラミドが存在しないが、セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進効果を有し、さらに、セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤として用い得ることが確認された。実施例71セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造大豆残渣からセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を製造する微生物として、ブレラツガエBulleratsugae江南大学から購入され、中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに受託され、受託番号CICIMY0259を使用した。YPD培地YeastExtractPeptoneDextroseMediumで30°C培養して得られたの上記菌株を、セラミド/グルコシルセラミド産生促進剤製造培地10wv大豆残渣、1wv葡萄糖100mLを含む300mL容三角フラスコに接種し、30°Cで72時間培養した。その中、大豆残渣は大豆を水に入れ、12時間含浸し、大豆に水を十分に吸収させて、水を吸収した大豆を研削して粉砕し、濾過、乾燥を経て調製した。得られた培養液中からセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を精製するために、3000rpm、10mins遠心分離で菌体を除き、回収した培養上清に対して、2.5倍体積の無水EtOHを加え、本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤含有の粗抽出物本発明品7Aとした。さらに、その粗抽出物を、超音波処理装置Branson社製で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で40°C以下乾燥処理して一定の重さになった大豆残渣の発酵エキスを、本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤とした。さらに、その大豆残渣の発酵エキスを50vvEtOHで溶解し、1vv本発明品7B及び01vv本発明品7Cの濃度に調製後、4°Cで保存して、次のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進試験に供する。セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進試験<角化細胞Keratinocytes培養>まず、正常ヒトの活性化角化細胞CascadeCoLtdを初代細胞として、75cm2の培養フラスコ増殖因子を含有する培地2mlに、37°C、5CO2のインキュベーターにて80~90コンフルエントの状態に達するまで培養した。継代細胞を175cm2の培養フラスコに80~90コンフルエントの状態に達するまでに持続培養した。さらに12wellPlate細胞数1×105個mLに2mLずつ播種し、37°C、5CO2のインキュベーターにて80~90コンフルエントの状態に達するまで持続培養した。次いで、上記12wellPlateにおいて増殖因子を含有しない培地を変更して、上述実施例71で得たの大豆残渣の発酵エキスのエタノール溶液本発明品7A~7Cを20μlWellずつ添加した。なお、コントロールとしてエタノールのみセラミド及びグルコシルセラミド産生促進剤無添加を添加した。同じ条件で72時間培養した。72時間培養した後、上清の培養液を除去し、PBS2mLWellにて細胞を2回洗浄した後、1mLPBSを入れ、各々の細胞をセルハーベスターで試験管に回収した。それを、後のセラミド、グルコシルセラミド及び蛋白質の解析用の試料とした。<脂質抽出>脂質抽出は、BlighDyer法を用いて行った。具体的には、前記回収した細胞を含むPBS液に、まず、メタノール:クロロホルム2.5mL:1.25mL加え攪拌し、次に、20分間振とうした。その後、遠心分離3000rpm、5分を行い、上清Aと沈殿Bを取り分けて、その上清Aをセラミド量及びグルコシルセラミド量解析に供し、沈殿Bを次のタンパク量解析に供する。<タンパク量解析>細胞中のセラミド量及びグルコシルセラミド量を表示するためにタンパク量解析を行った。回収した沈殿Bに、900μlSDS溶液を入れ、混合し、60°Cで2時間加熱した後、タンパク質を変性分解させるように冷却した。次いで、100μl2NHClを加え、BCAKit法によりタンパク量μgmLを測定した。<セラミド量及びグルコシルセラミド量の解析>残った上清AにPBS:クロロホルム1.25mL:1.25mLを入れ、20分間振動し、遠心分離3000rpm、5分を行い、下相にあるクロロホルム層を単離、回収した。回収したクロロホルム層を30°C、窒素還流下で乾固させて乾燥品を得た。乾燥品をクロロホルム-メタノール混合溶媒容量比=25ml:125ml100μlに溶解し、下記の薄層クロマトグラフィーによりセラミド及びグルコシルセラミドの定量それぞれをCer及びGlyCerとし、単位μgmLを行った。乾燥のTLC板を利用して、展開溶媒であるクロロホルム:メタノール:酢酸=190:9:1vvvで薄層クロマトグラフィーを行った。展開剤がTCL板のトップに到達した後、ドライヤーで展開剤を乾燥した。次いで上記操作を1回繰り返した。その後、展開溶媒であるクロロホルム:メタノール:アセトン=76:20:4vvvで薄層クロマトグラフィーを行った。展開剤がTCL板のボタムからの2.5cmの位置に到達した後、展開を停止し、ドライヤーで展開剤を乾燥した。硫酸銅のリン酸溶液を噴霧し、乾燥して、TCL板を180°Cのヒータに置き7分間加熱して顕色させた。顕色されたTLC板をスキャンしてセラミド又はグルコシルセラミドの量を解析した。その後、下式1より、得られた値を各々のタンパク量で割り、CerProとGlyCerProが得られる。前記コントロールのそれぞれCerProとGlyCerProを1として、本発明のCerProとGlyCerProの相対値を算出した。また、前記コントロールのwellあたりのタンパク量を100として、wellあたりのセラミドの量及びグルコシルセラミド量それぞれをCerWell及びGlyCerWellとし、コントロールに対する相対量を求めた。合わせて表7に示した。表7に示すように、実施例71で得た本発明品7A~7Cのいずれは著しいセラミド産生促進効果を示した。従って、本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤は、セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進効果が認められた。セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤にセラミド及び/又はグルコシルセラミドが存在しないことを証明する試験上記細胞培養を行わなく、TLC法のみで上記実施例71で得たのセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を解析して、その結果として、本発明品の中にはセラミド/グルコシルセラミドは存在しないことを示した。このことから、本発明品自体には、セラミド又はグルコシルセラミドが存在しないが、セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進効果を有し、さらに、セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤として用い得ることが確認された。実施例81<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造発酵液の処理>まず、以下の方法で培地を調製した。大豆を水に入れ、12時間含浸し、大豆に水を十分に吸収させた。水を吸収した大豆を研削して粉砕し、濾過、滴り乾燥し、大豆残渣を得た。当該大豆残渣を、大豆残渣の濃度が10wv、ブドウ糖の濃度が1wvになるように、ブドウ糖及び水と混合して、培地とした。次いで、上記培地100mlを三角フラスコに入れ、Rhodotorulamucilaginosa江南大学工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMY0250として受託されている。を規定の量で接種し、30°Cで3日間培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、1mlの混合液を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料8Aとし、4°Cの冷蔵庫で保存して、細胞培養に供する。当該EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料8B、8Cとし、さらに、試料8B、8Cをそれぞれ50vvEtOHで溶解し、1vv及び01vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の評価>細胞培養まず、正常ヒトの活性化角化細胞CascadeCoLtdを初代細胞として、75cm2の培養フラスコ増殖因子を含有する培地2mlに、37°C、5CO2のインキュベーターにて80~90コンフルエントの状態に達するまで培養した。継代細胞を175cm2の培養フラスコに80~90コンフルエントの状態に達するまでに持続培養した。継代培養した後のヒト表皮角化細胞を12wellPlate細胞数1×105個mLに2mLずつ播種し、37°C、5CO2のインキュベーターにて80~90コンフルエントの状態に達するまで持続培養した。次いで、上記12wellPlateにおいて増殖因子を含有しない培地を変更し、本発明の製品試料8A、8B、8C及びコントロール50vvのエタノール溶液をそれぞれ当該12wellPlaten2に添加した。同じ条件で3日間培養した。その後、上清の培養液を除去し、PBS2mLWellにて細胞を2回洗浄した後、1mLPBSを入れ、各々の細胞をセルハーベスターで試験管に回収した。それを、後のセラミド、グルコシルセラミド及び蛋白質の解析用の試料とした。セラミドグルコシルセラミド促進効果の確認前記回収された細胞を含むPBS液に、まず、メタノール:クロロホルム2.5ml:1.25ml加え攪拌し、次に、20分間振とうした。その後、遠心分離3000rpm、5分を行い、上清aと沈殿bを取り分けて、その上清aをセラミド量及びグルコシルセラミド量解析に供し、沈殿bを次のタンパク量解析に供した。1セラミド量及びグルコシルセラミド量の解析上清aにPBS:クロロホルム1.25ml:1.25mlを入れ、20分間振動し、遠心分離3000rpm、5分を行い、下相にあるクロロホルム層を単離、回収した。回収されたクロロホルム層を30°C、窒素雰囲気で乾固させた。乾燥品をクロロホルム-メタノール混合溶媒容量比=25ml:125ml100μlに溶解し、下記の薄層クロマトグラフィーによりセラミド及びグルコシルセラミドの定量に供した。セラミド又はグルコシルセラミド標準品と試料溶液とを乾燥のTLC板に入れ、展開溶媒であるクロロホルム:メタノール:酢酸=190:9:1vvvで薄層クロマトグラフィーを行った。展開剤がTCL板のトップに到達した後、ドライヤーで展開剤を乾燥した。次いで上記操作を1回繰り返した。その後、展開溶媒であるクロロホルム:メタノール:アセトン=76:20:4vvvで薄層クロマトグラフィーを行った。展開剤がTCL板のボタムからの2.5cmの位置に到達した後、展開を停止し、ドライヤーで展開剤を乾燥した。硫酸銅のリン酸溶液を噴霧し、乾燥して、TCL板を180°Cのヒータに置き7分間加熱して顕色させた。顕色されたTLC板をスキャンしてセラミド又はグルコシルセラミドの量それぞれをCer及びGlyCerとし、単位μgmLを解析した。2タンパク量の解析細胞中のセラミド量及びグルコシルセラミド量を表示するためにタンパク量の解析を行った。上記沈殿bに、900μlSDSドデシルスルホン酸ナトリウム溶液を入れ、混合し、60°Cで2時間加熱した後、タンパク質を変性分解させ、冷却した。次いで、100μl2NHClを加え、BCAKit法タンパク量の解析用のキットによりタンパク量Proと記する。μgmLを測定した。3解析の結果本発明品とコントロールの試料のそれぞれに対して、下式のように、CerProとGlyCerProを測定した。前記コントロールのCerProとGlyCerProのそれぞれを1とした場合の、本発明のCerProとGlyCerProの相対値を算出して表8に示した。また、前記コントロールのwellあたりのタンパク量を100とした場合の、本発明のwellあたりのタンパク量の相対値Proを算出して、それによりwellあたりのセラミドの量及びグルコシルセラミド量コントロールに対する相対量を求めた。合わせて表8-1~表8-2に示した。CerWellCerPro×ProGlyCerWellGlyCerPro×Proなお、CerPro又はCerWellが1コントロールよりも高い場合、当該試料がセラミド産生促進効果を有すると見なされる。また、GlyCerPro又はGlyCerWellが1コントロールよりも高い場合、当該試料がグルコシルセラミド産生促進効果を有すると見なされる。表8-1~表8-2から明らかなように、本発明品8A、8B、8Cは、セラミド産生促進効果が確認された。実施例82実施例81に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Rhodotorulamucilaginosa番号CICIMY0250をRhodotorulamucilaginosa江南大学工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMY0433として受託されている。に替えた以外、実施例81と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、1mlの混合液を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料8Dとし、4°Cの冷蔵庫で保存して、細胞培養に供する。上記EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料8E、8Fとし、さらに、試料8E、8Fをそれぞれ50vvEtOHで溶解し、1vv及び01vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例81と同様にして、試料8D、8E、8Fのセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表8-1~表8-2に示した。表8-1~表8-2から明らかなように、実施例82の試料8E、8Fは、グルコシルセラミド産生促進効果を示すことが確認された。実施例83実施例81に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Rhodotorulamucilaginosa番号CICIMY0250をRhodotorulamucilaginosa江南大学工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMY0430として受託されている。に替えた以外、実施例81と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、1mlの混合液を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料8Gとし、4°Cの冷蔵庫で保存して、細胞培養に供する。実施例81と同様にして、試料8Gのセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表8-1~表8-2に示した。表8-1~表8-2から明らかなように、実施例83の試料8Gは、セラミド及びグルコシルセラミド産生促進効果を示すことが確認された。実施例84実施例81に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Rhodotorulamucilaginosa番号CICIMY0250をRhodotorulaglutinis江南大学工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMY0148として受託されている。に替えた以外、実施例81と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、上記EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料8Hとし、さらに、試料8Hを50vvEtOHで溶解し、1vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例81と同様にして、試料8Hのセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表8-1~表8-2に示した。表8-1~表8-2から明らかなように、実施例84の試料8Hは、グルコシルセラミド産生促進効果を示すことが確認された。実施例85実施例81に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Rhodotorulamucilaginosa番号CICIMY0250をRhodotorulamucilaginosa江南大学工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMY0324として受託されている。に替えた以外、実施例81と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、上記EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料8I、8Jとし、さらに、試料8I、8Jをそれぞれ50vvEtOHで溶解し、1vv及び01vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例81と同様にして、試料8I、8Jのセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表8-1~表8-2に示した。表8-1~表8-2から明らかなように、実施例85の試料8I、8Jは、グルコシルセラミド産生促進効果を示すことが確認された。実施例86実施例81に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Rhodotorulamucilaginosa番号CICIMY0250をRhodotorulamucilaginosa江南大学工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMY0337として受託されている。に替えた以外、実施例81と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、1mlの混合液を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料8Kとし、4°Cの冷蔵庫で保存して、細胞培養に供する。実施例81と同様にして、試料Kのセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表8-1~表8-2に示した。表8-1~表8-2から明らかなように、実施例86の試料8Kは、グルコシルセラミド産生促進効果を示すことが確認された。実施例87実施例81に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Rhodotorulamucilaginosa番号CICIMY0250をRhodotorulamucilaginosa江南大学工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMY0394として受託されている。に替えた以外、実施例81と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、上記EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料8Lとし、さらに、試料8Lを50vvEtOHで溶解し、1vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例81と同様にして、試料8Lのセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表8-1~表8-2に示した。表8-1~表8-2から明らかなように、実施例87の試料8Lは、セラミド及びグルコシルセラミド産生促進効果を示すことが確認された。実施例88実施例81に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Rhodotorulamucilaginosa番号CICIMY0250をRhodotorulamucilaginosa江南大学工業微生物資源および情報センターCICIMに番号CICIMY0418として受託されている。に替えた以外、実施例81と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、1mlの混合液を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料8Mとし、4°Cの冷蔵庫で保存して、細胞培養に供する。上記EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料8N、8Oとし、さらに、試料8N、8Oをそれぞれ50vvEtOHで溶解し、1vv及び01vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例81と同様にして、試料8M、8N、8Oのセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表8-1~表8-2に示した。表8-1~表8-2から明らかなように、実施例88の試料8M、8N、8Oは、セラミド及びグルコシルセラミド産生促進効果を示すことが確認された。実施例89実施例81に記載の<セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造>において、Rhodotorulamucilaginosa江南大学工業微生物資源および情報センター番号CICIMY0250をRhodotorulamucilaginosaCICIMに番号CICIMY0423として受託されている。に替えた以外、実施例81と同様に培養した。得られた培養液に対して、3000rpm、10mins遠心分離を行った。残した培養上清に対して、2.5倍体積のEtOHを加え、上記EtOHを加えた混合液を、超音波処理装置で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で乾燥処理して一定の重さになった。当該乾燥品を本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の試料8Pとし、さらに、試料8Pを50vvEtOHで溶解し、01vvの濃度の溶液に調製した後、4°Cの冷蔵庫で保存して、次の細胞培養に供した。実施例81と同様にして、試料8Pのセラミドグルコシルセラミド産生促進効果を評価した。その結果を合わせて表8-1~表8-2に示した。表8-1~表8-2から明らかなように、実施例89の試料8Pは、セラミド及びグルコシルセラミド産生促進効果を示すことが確認された。なお、試料8A~8Pについて、それらを上記ヒトの活性化角化細胞を含む12wellPlateに加えることを行わない即ち、上記細胞培養を行わないままで、セラミド量及びグルコシルセラミド量の解析を行った。上記以外は、上記実施例81と同様にした。その結果は、試料8A~8Pの何れかにもセラミド又はグルコシルセラミドが存在しないことが確認された。これから、本発明の製造物自身には、セラミド又はグルコシルセラミドが存在しないが、本発明の製造物が、セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進の効果を有し、セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤として用い得ることが分かる。実施例91セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造大豆残渣からセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を製造する微生物として、スポロボロミセスロゼウスSporobolomycesroseus江南大学から購入され、中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに受託され、委託番号CICIMY0247を使用した。YPD培地YeastExtractPeptoneDextroseMediumで30°C培養して得られたの上記菌株を、セラミド/グルコシルセラミド産生促進剤製造培地10wv大豆残渣、1wv葡萄糖100mLを含む300mL容三角フラスコに接種し、30°Cで72時間培養した。その中、大豆残渣は大豆を水に入れ、12時間含浸し、大豆に水を十分に吸収させて、水を吸収した大豆を研削して粉砕し、濾過、乾燥を経て調製した。得られた培養液中からセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を精製するために、3000rpm、10mins遠心分離で菌体を除き、回収した培養上清に対して、2.5倍体積の無水EtOHを加え、本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の粗抽出物本発明品9Aを得た。さらに、4°Cで保存して、次のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進試験に供する。実施例92大豆残渣からセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を製造する微生物として、スポロボロミセスロゼウスSporobolomycesroseus江南大学から購入され、中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに受託され、受託番号CICIMY0193を使用し、実施例91と同様の方法で本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の粗抽出物を得た。さらに、その粗抽出物を、超音波処理装置Branson社製で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で40°C以下乾燥処理して一定の重さになった大豆残渣の発酵エキスを、本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤とした。さらに、その大豆残渣の発酵エキスを50vvEtOHで溶解し、01vv本発明品9Bの濃度に調製後、4°Cで保存して、次のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進試験に供する。実施例93大豆残渣からセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を製造する微生物として、スポロボロミセスロゼウスSporobolomycesroseus江南大学から購入され、中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに受託され、受託番号CICIMY0132を使用し、実施例91と同様の方法で本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の粗抽出物を得た本発明品9C。さらに、その粗抽出物を、超音波処理装置Branson社製で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で40°C以下乾燥処理して一定の重さになった大豆残渣の発酵エキスを、本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤とした。さらに、その大豆残渣の発酵エキスを50vvEtOHで溶解し、1vvの濃度本発明品9Dに調製後、4°Cで保存して、次のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進試験に供する。セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進試験<角化細胞Keratinocytesの培養>まず、正常ヒトの活性化角化細胞CascadeCoLtdを初代細胞として、75cm2の培養フラスコ増殖因子を含有する培地2mlに、7°C、5CO2のインキュベーターにて80~90コンフルエントの状態に達するまで培養した。継代細胞を175cm2の培養フラスコに80~90コンフルエントの状態に達するまでに持続培養した。さらに12wellPlate細胞数1×105個mLに2mLずつ播種し、37°C、5CO2のインキュベーターにて80~90コンフルエントの状態に達するまで持続培養した。次いで、上記12wellPlateにおいて増殖因子を含有しない培地を変更して、それぞれ上述実施例91~93で得たの大豆残渣の発酵エキスのエタノール溶液を20μlWellずつ添加した。なお、コントロールとしてエタノールのみセラミド及びグルコシルセラミド産生促進剤無添加を添加した。同じ条件で72時間培養した。72時間培養した後、上清の培養液を除去し、PBS2mLWellにて細胞を2回洗浄した後、1mLPBSを入れ、各々細胞をセルハーベスターで試験管に回収した。それを、後のセラミド、グルコシルセラミド及び蛋白質の解析用の試料とした。<脂質抽出>脂質抽出は、BlighDyer法を用いて行った。具体的には、前記回収した細胞を含むPBS液に、まず、メタノール:クロロホルム2.5mL:1.25mL加え攪拌し、次に、20分間振とう混合した。その後、遠心分離3000rpm、5分を行い、上清Aと沈殿Bを取り分けて、その上清Aをセラミド量及びグルコシルセラミド量解析に供し、沈殿Bを次のタンパク量解析に供する。<タンパク量解析>細胞中のセラミド量及びグルコシルセラミド量を表示するためにタンパク量解析を行った。回収した沈殿Bに、900μlSDS溶液を入れ、混合し、60°Cの水浴で2時間加熱した後、タンパク質を変性分解させるように冷却した。次いで、100μl2NHClを加え、BCAKit法によりタンパク量μgmLを測定した。<セラミド量及びグルコシルセラミド量の解析>残った上清AにPBS:クロロホルム1.25mL:1.25mLを入れ、20分間振動混合し、遠心分離3000rpm、5分を行い、下相にあるクロロホルム層を単離、回収した。回収したクロロホルム層を30°C、窒素還流下で乾固させて乾燥品を得た。乾燥品をクロロホルム-メタノール混合溶媒容量比=25ml:125ml100μlに溶解し、下記の薄層クロマトグラフィーによりセラミド及びグルコシルセラミドの定量それぞれをCer及びGlyCerとし、単位μgmLを行った。乾燥のTLC板を利用して、展開溶媒であるクロロホルム:メタノール:酢酸=190:9:1vvvで薄層クロマトグラフィーを行った。展開剤がTCL板のトップに到達した後、ドライヤーで展開剤を乾燥した。次いで上記操作を1回繰り返した。その後、展開溶媒であるクロロホルム:メタノール:アセトン=76:20:4vvvで薄層クロマトグラフィーを行った。展開剤がTCL板のボタムからの2.5cmの位置に到達した後、展開を停止し、ドライヤーで展開剤を乾燥した。硫酸銅のリン酸溶液を噴霧し、乾燥して、TCL板を180°Cのヒータに置き7分間加熱して顕色させた。顕色されたTLC板をスキャンしてセラミド又はグルコシルセラミドの量を解析した。その後、下式1より、得られた値を各々のタンパク量で割り、CerProとGlyCerProが得られる。前記コントロールのそれぞれCerProとGlyCerProを1として、本発明のCerProとGlyCerProの相対値を算出した。また、前記コントロールのwellあたりのタンパク量を100として、wellあたりのセラミドの量及びグルコシルセラミド量それぞれをCerWell及びGlyCerWellとし、コントロールに対する相対量を求めた。合わせて表9に示した。表9に示すように、実施例91及び実施例93で得た本発明品は著しいグルコシルセラミド産生促進効果を示した。実施例92で得た本発明品は著しいセラミド産生促進効果を示した。従って、本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤は、そのセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進効果が認められた。セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤にセラミド及び/又はグルコシルセラミドが存在しないことを証明する試験上記細胞培養を行わなく、TLC法のみで上記実施例91~93で得たのセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を解析して、その結果として、本発明品の中にはセラミド/グルコシルセラミドは存在しないことを示した。このことから、本発明品自体には、セラミド又はグルコシルセラミドが存在しないが、セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進効果を有し、さらに、セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤として用い得ることが確認された。実施例101セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造大豆残渣からセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を製造する微生物として、ブレタノマイセスクラウセニィBrettanomycesclaussenii江南大学から購入され、中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに受託され、委託番号CICIMY0125を使用した。YPD培地YeastExtractPeptoneDextroseMediumで30°C培養して得られたの上記菌株を、セラミド/グルコシルセラミド産生促進剤製造培地10wv大豆残渣、1wv葡萄糖100mLを含む300mL容三角フラスコに接種し、30°Cで72時間培養した。その中、大豆残渣は大豆を水に入れ、12時間含浸し、大豆に水を十分に吸収させて、水を吸収した大豆を研削して粉砕し、濾過、乾燥を経て調製した。得られた培養液中からセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を精製するために、3000rpm、10mins遠心分離で菌体を除き、回収した培養上清に対して、2.5倍体積の無水EtOHを加え、さらに、超音波処理装置Branson社製で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で40°C以下乾燥処理して一定の重さになった大豆残渣の発酵エキスを、本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤とした。さらに、その大豆残渣の発酵エキスを50vvEtOHで溶解し、1の濃度本発明品10Aに調製後、4°Cで保存して、次のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進試験に供する。実施例102大豆残渣からセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を製造する微生物として、ブレタノマイセスクラウセニィBrettanomycesclaussenii江南大学から購入され、中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに受託され、受託番号CICIMY0251を使用し、実施例101と同様の方法で本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤として大豆残渣の発酵エキスを得た。さらに、その大豆残渣の発酵エキスを50vvEtOHで溶解し、01vv本発明品10Bの濃度に調製後、4°Cで保存して、次のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進試験に供する。実施例103大豆残渣からセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を製造する微生物として、ブレタノマイセスクラウセニィBrettanomycesclaussenii江南大学から購入され、中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに受託され、受託番号CICIMY0127を使用し、実施例101と同様の方法で本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤として大豆残渣の発酵エキスを得た。さらに、その大豆残渣の発酵エキスを50vvEtOHで溶解し、それぞれ1vv本発明品10C及び01vv本発明品10Dの濃度に調製後、4°Cで保存して、次のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進試験に供する。セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進試験<角化細胞Keratinocytesの培養>まず、正常ヒトの活性化角化細胞CascadeCoLtdを初代細胞として、75cm2の培養フラスコ増殖因子を含有する培地2mlに、7°C、5CO2のインキュベーターにて80~90コンフルエントの状態に達するまで培養した。継代細胞を175cm2の培養フラスコに80~90コンフルエントの状態に達するまでに持続培養した。さらに12wellPlate細胞数1×105個mLに2mLずつ播種し、37°C、5CO2のインキュベーターにて80~90コンフルエントの状態に達するまで持続培養した。次いで、上記12wellPlateにおいて増殖因子を含有しない培地を変更して、それぞれ上述実施例101~103で得たの大豆残渣の発酵エキスのエタノール溶液を20μlWellずつ添加した。なお、コントロールとしてエタノールのみセラミド及びグルコシルセラミド産生促進剤無添加を添加した。同じ条件で72時間培養した。72時間培養した後、上清の培養液を除去し、PBS2mLWellにて細胞を2回洗浄した後、1mLPBSを入れ、各々細胞をセルハーベスターで試験管に回収した。それを、後のセラミド、グルコシルセラミド及び蛋白質の解析用の試料とした。<脂質抽出>脂質抽出は、BlighDyer法を用いて行った。具体的には、前記回収した細胞を含むPBS液に、まず、メタノール:クロロホルム2.5mL:1.25mL加え攪拌し、次に、20分間振とう混合した。その後、遠心分離3000rpm、5分を行い、上清Aと沈殿Bを取り分けて、その上清Aをセラミド量及びグルコシルセラミド量解析に供し、沈殿Bを次のタンパク量解析に供する。<タンパク量解析>細胞中のセラミド量及びグルコシルセラミド量を表示するためにタンパク量解析を行った。回収した沈殿Bに、900μlSDS溶液を入れ、混合し、60°Cの水浴で2時間加熱した後、タンパク質を変性分解させるように冷却した。次いで、100μl2NHClを加え、BCAKit法によりタンパク量μgmLを測定した。<セラミド量及びグルコシルセラミド量の解析>残った上清AにPBS:クロロホルム1.25mL:1.25mLを入れ、20分間振動混合し、遠心分離3000rpm、5分を行い、下相にあるクロロホルム層を単離、回収した。回収したクロロホルム層を30°C、窒素還流下で乾固させて乾燥品を得た。乾燥品をクロロホルム-メタノール混合溶媒容量比=25ml:125ml100μlに溶解し、下記の薄層クロマトグラフィーによりセラミド及びグルコシルセラミドの定量それぞれをCer及びGlyCerとし、単位μgmLを行った。乾燥のTLC板を利用して、展開溶媒であるクロロホルム:メタノール:酢酸=190:9:1vvvで薄層クロマトグラフィーを行った。展開剤がTCL板のトップに到達した後、ドライヤーで展開剤を乾燥した。次いで上記操作を1回繰り返した。その後、展開溶媒であるクロロホルム:メタノール:アセトン=76:20:4vvvで薄層クロマトグラフィーを行った。展開剤がTCL板のボタムからの2.5cmの位置に到達した後、展開を停止し、ドライヤーで展開剤を乾燥した。硫酸銅のリン酸溶液を噴霧し、乾燥して、TCL板を180°Cのヒータに置き7分間加熱して顕色させた。顕色されたTLC板をスキャンしてセラミド又はグルコシルセラミドの量を解析した。その後、下式1より、得られた値を各々のタンパク量で割り、CerProとGlyCerProが得られる。前記コントロールのそれぞれCerProとGlyCerProを1として、本発明のCerProとGlyCerProの相対値を算出した。また、前記コントロールのwellあたりのタンパク量を100として、wellあたりのセラミドの量及びグルコシルセラミド量それぞれをCerWell及びGlyCerWellとし、コントロールに対する相対量を求めた。合わせて表10に示した。表10に示すように、実施例101で得た本発明品はセラミド産生促進効果及びグルコシルセラミド産生促進効果を示した。また、実施例102及び実施例103で得た本発明品は著しいグルコシルセラミド産生促進効果を示した。従って、本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤は、そのセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進効果が認められた。セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤にセラミド及び/又はグルコシルセラミドが存在しないことを証明する試験上記細胞培養を行わなく、TLC法のみで上記実施例101~103で得たのセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を解析して、その結果として、本発明品の中にはセラミド/グルコシルセラミドは存在しないことを示した。このことから、本発明品自体には、セラミド又はグルコシルセラミドが存在しないが、セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進効果を有し、さらに、セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤として用い得ることが確認された。実施例111セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤の製造大豆残渣からセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を製造する微生物として、ヤロウィアリポリティカYarrowialipolytica江南大学から購入され、中国高校工業微生物資源および情報センターCICIMに受託され、委託番号CICIMY0311を使用した。YPD培地YeastExtractPeptoneDextroseMediumで30°C培養して得られたの上記菌株を、セラミド/グルコシルセラミド産生促進剤製造培地10wv大豆残渣、1wv葡萄糖100mLを含む300mL容三角フラスコに接種し、30°Cで72時間培養した。その中、大豆残渣は大豆を水に入れ、12時間含浸し、大豆に水を十分に吸収させて、水を吸収した大豆を研削して粉砕し、濾過、乾燥を経て調製した。得られた培養液中からセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を精製するために、3000rpm、10mins遠心分離で菌体を除き、回収した培養上清に対して、2.5倍体積の無水EtOHを加え、さらに、超音波処理装置Branson社製で10分間処理し、3000rpm、30mins遠心分離で上清を回収した。その上清約70mLをろ紙でろ過して、さらに濾過液を真空乾燥機で40°C以下乾燥処理して一定の重さになった大豆残渣の発酵エキスを、本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤とした。さらに、その大豆残渣の発酵エキスを50vvEtOHで溶解し、1の濃度に調製後、4°Cで保存して、次のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進試験に供する。セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進試験<角化細胞Keratinocytesの培養>まず、正常ヒトの活性化角化細胞CascadeCoLtdを初代細胞として、75cm2の培養フラスコ増殖因子を含有する培地2mlに、7°C、5CO2のインキュベーターにて80~90コンフルエントの状態に達するまで培養した。継代細胞を175cm2の培養フラスコに80~90コンフルエントの状態に達するまでに持続培養した。さらに12wellPlate細胞数1×105個mLに2mLずつ播種し、37°C、5CO2のインキュベーターにて80~90コンフルエントの状態に達するまで持続培養した。次いで、上記12wellPlateにおいて増殖因子を含有しない培地を変更して、それぞれ上述実施例111で得たの大豆残渣の発酵エキスのエタノール溶液を20μlWellずつ添加した。なお、コントロールとしてエタノールのみセラミド及びグルコシルセラミド産生促進剤無添加を添加した。同じ条件で72時間培養した。72時間培養した後、上清の培養液を除去し、PBS2mLWellにて細胞を2回洗浄した後、1mLPBSを入れ、各々細胞をセルハーベスターで試験管に回収した。それを、後のセラミド、グルコシルセラミド及び蛋白質の解析用の試料とした。<脂質抽出>脂質抽出は、BlighDyer法を用いて行った。具体的には、前記回収した細胞を含むPBS液に、まず、メタノール:クロロホルム2.5mL:1.25mL加え攪拌し、次に、20分間振とう混合した。その後、遠心分離3000rpm、5分を行い、上清Aと沈殿Bを取り分けて、その上清Aをセラミド量及びグルコシルセラミド量解析に供し、沈殿Bを次のタンパク量解析に供する。<タンパク量解析>細胞中のセラミド量及びグルコシルセラミド量を表示するためにタンパク量解析を行った。回収した沈殿Bに、900μlSDS溶液を入れ、混合し、60°Cの水浴で2時間加熱した後、タンパク質を変性分解させるように冷却した。次いで、100μl2NHClを加え、BCAKit法によりタンパク量μgmLを測定した。<セラミド量及びグルコシルセラミド量の解析>残った上清AにPBS:クロロホルム1.25mL:1.25mLを入れ、20分間振動混合し、遠心分離3000rpm、5分を行い、下相にあるクロロホルム層を単離、回収した。回収したクロロホルム層を30°C、窒素還流下で乾固させて乾燥品を得た。乾燥品をクロロホルム-メタノール混合溶媒容量比=25ml:125ml100μlに溶解し、下記の薄層クロマトグラフィーによりセラミド及びグルコシルセラミドの定量それぞれをCer及びGlyCerとし、単位μgmLを行った。乾燥のTLC板を利用して、展開溶媒であるクロロホルム:メタノール:酢酸=190:9:1vvvで薄層クロマトグラフィーを行った。展開剤がTCL板のトップに到達した後、ドライヤーで展開剤を乾燥した。次いで上記操作を1回繰り返した。その後、展開溶媒であるクロロホルム:メタノール:アセトン=76:20:4vvvで薄層クロマトグラフィーを行った。展開剤がTCL板のボタムからの2.5cmの位置に到達した後、展開を停止し、ドライヤーで展開剤を乾燥した。硫酸銅のリン酸溶液を噴霧し、乾燥して、TCL板を180°Cのヒータに置き7分間加熱して顕色させた。顕色されたTLC板をスキャンしてセラミド又はグルコシルセラミドの量を解析した。その後、下式1より、得られた値を各々のタンパク量で割り、CerProとGlyCerProが得られる。前記コントロールのそれぞれCerProとGlyCerProを1として、本発明のCerProとGlyCerProの相対値を算出した。また、前記コントロールのwellあたりのタンパク量を100として、wellあたりのセラミドの量及びグルコシルセラミド量それぞれをCerWell及びGlyCerWellとし、コントロールに対する相対量を求めた。合わせて表11に示した。表11に示すように、実施例111で得た本発明品は著しいグルコシルセラミド産生促進効果を示した。従って、本発明のセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤は、そのセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進効果が認められた。セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤にセラミド及び/又はグルコシルセラミドが存在しないことを証明する試験上記細胞培養を行わなく、TLC法のみで上記実施例111で得たのセラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤を解析して、その結果として、本発明品の中にはセラミド/グルコシルセラミドは存在しないことを示した。このことから、本発明品自体には、セラミド又はグルコシルセラミドが存在しないが、セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進効果を有し、さらに、セラミド及び/又はグルコシルセラミド産生促進剤として用い得ることが確認された。"