"植物のバイオマスをより多く生産する方法であって、未処理植物と比較して前記植物のバイオマスをより多く生産するのに効果的な量でバチルススブチリスBacillussubtilisFB17を前記植物、前記植物の種子、または前記植物もしくは前記種子の周囲の土壌に投与することを含む方法。前記バチルススブチリスBacillussubtilisFB17を前記植物の前記種子に投与することを含む、請求項1に記載の方法。前記植物はトウモロコシ植物、ダイズ植物、米植物、およびトマト植物からなる群から選択される、請求項1に記載の方法。前記植物はバイオエネルギー作物植物である、請求項1に記載の方法。前記植物はセイヨウヤマカモジBrachypodiumdistachyonである、請求項4に記載の方法。未処理植物と比較して前記植物のバイオマスを約5~約100多く生産するのに効果的な量で前記バチルススブチリスBacillussubtilisFB17を投与することを含む、請求項1に記載の方法。約1×106CFU/種子~約1×108CFU/種子の量で前記バチルススブチリスBacillussubtilisFB17を前記種子に投与することを含む、請求項2に記載の方法。植物の乾燥耐性を高める方法であって、未処理植物と比較して前記植物の乾燥耐性を高めるのに効果的な量でバチルススブチリスBacillussubtilisFB17を前記植物、前記植物の種子、または前記植物もしくは前記種子の周囲の土壌に投与することを含む方法。前記バチルススブチリスBacillussubtilisFB17を前記植物の前記種子に投与することを含む、請求項8に記載の方法。前記植物はトウモロコシ植物、ダイズ植物、米植物、およびトマト植物からなる群から選択される、請求項8に記載の方法植物のリグニン濃度を低下させる方法であって、未処理植物と比較して前記植物のリグニン濃度を低下させるのに効果的な量でバチルススブチリスBacillussubtilisFB17を前記植物、前記植物の種子、または前記植物もしくは前記種子の周囲の土壌に投与することを含む方法。前記バチルススブチリスBacillussubtilisFB17を前記植物の前記種子に投与することを含む、請求項11に記載の方法。前記植物はトウモロコシ植物、ダイズ植物、米植物、およびトマト植物からなる群から選択される、請求項11に記載の方法。約1×106CFU/種子~約1×108CFU/種子の量で前記バチルススブチリスBacillussubtilisFB17を前記種子に投与することを含む、請求項12に記載の方法。バイオ燃料を生産する方法であって、バチルススブチリスBacillussubtilisFB17が投与された請求項11に記載の植物のバイオマスを前記バイオ燃料に変換することを含む方法。請求項15に従い生産されたバイオ燃料。植物の鉄濃度を上昇させる方法であって、未処理植物と比較して前記植物の鉄濃度を上昇させるのに効果的な量でバチルススブチリスBacillussubtilisFB17を前記植物、前記植物の種子、または前記植物もしくは前記種子の周囲の土壌に投与することを含む方法。前記植物は米植物である、請求項17に記載の方法。播く前に前記バチルススブチリスBacillussubtilisFB17を前記米植物の前記種子に投与することを含む、請求項18に記載の方法。未処理米植物と比較して前記米植物の鉄濃度を少なくとも約25上昇させるのに効果的な量で前記バチルススブチリスBacillussubtilisFB17を投与することを含む、請求項18に記載の方法。約1×106CFU/種子~約1×108CFU/種子の量で前記バチルススブチリスBacillussubtilisFB17を前記種子に投与することを含む、請求項19に記載の方法。病原真菌による植物の感染を阻害する方法であって、未処理植物と比較して前記病原真菌による前記植物の感染を阻害する量でバチルススブチリスBacillussubtilisFB17を前記植物、前記植物の種子、または前記植物もしくは前記種子の周囲の土壌に投与することを含む方法。前記植物は米植物であり、前記病原真菌はイネいもち病である、請求項22に記載の方法。播く前に前記バチルススブチリスBacillussubtilisFB17を前記米植物の前記種子に投与することを含む、請求項23に記載の方法。約1×106CFU/種子~約1×108CFU/種子の量で前記バチルススブチリスBacillussubtilisFB17を前記米植物の前記種子に投与することを含む、請求項24に記載の方法。前記イネいもち病の症状は未処理植物と比較して約5~約100軽減される、請求項23に記載の方法。バチルススブチリスBacillussubtilisFB17を含む農業用担体。バチルススブチリスBacillussubtilisFB17を含む植物種子コーティング。請求項28に記載のコーティングを含む植物の種子。本発明の実施形態は、植物のバイオマスをより多く生産する方法であって、未処理植物と比較して植物のバイオマスをより多く生産するのに効果的な量でバチルススブチリスBacillussubtilisFB17を植物、植物の種子、または植物もしくは植物の種子の周囲の土壌に投与することを含む方法を提供する。別の実施形態は、植物の乾燥耐性を向上させる方法であって、未処理植物と比較して植物の乾燥耐性を向上させるのに効果的な量でバチルススブチリスBacillussubtilisFB17を植物、植物の種子、または植物もしくは植物の種子の周囲の土壌に投与することを含む方法を提供する。別の実施形態は、植物のリグニン濃度を低下させる方法であって、未処理植物と比較して植物のリグニン濃度を低下させるのに効果的な量でバチルススブチリスBacillussubtilisFB17を植物、植物の種子、または植物もしくは植物の種子の周囲の土壌に投与することを含む方法を提供する。別の実施形態は、植物の種子発芽を促進する方法であって、未処理植物と比較して植物の種子発芽を促進するのに効果的な量でバチルススブチリスBacillussubtilisFB17を植物、植物の種子、または植物もしくは植物の種子の周囲の土壌に投与することを含む方法を提供する。別の実施形態は、植物の、特に米植物の鉄濃度を上昇させる方法であって、未処理植物と比較して植物の鉄濃度を上昇させるのに効果的な量でバチルススブチリスBacillussubtilisFB17を植物、植物の種子、または植物もしくは種子の周囲の土壌に投与することを含む方法を提供する。別の実施形態は、植物病原真菌plantfungalpathogenの増殖と、病原真菌、特にイネいもち病による植物、特に米植物の感染とを阻害する方法であって、病原真菌による植物の感染を阻害するのに効果的な量でバチルススブチリスBacillussubtilisFB17を植物、植物の種子、または植物もしくは種子の周囲の土壌に投与することを含む方法を提供する。追加の実施形態は、バチルススブチリスBacillussubtilisFB17を含む農業用担体および種子コーティングを提供する。バチルススブチリスBacillussubtilisFB17を投与した植物のバイオマスはバイオ燃料に変換することができ、生産された作物は、ヒトもしくは動物の食糧foodstock、または他の目的に安全に使用することができる。本出願人らは、植物に投与した際に驚くべき作用を示す植物生育促進根圏細菌PGPR、バチルススブチリスBacillussubtilisFB17の株を発見した。B.スブチリスB.subtilis株FB17は、北アメリカのレッドビートの根から最初に単離された本明細書に援用するFalletal.2004SystemAppli.Microbiol.27:372-379を参照されたい。この株は、表面のバイオフィルムおよび樹枝状の成長を形成する能力に基づきビートの根から単離された。特に、バチルススブチリスBacillussubtilisFB17は、乾燥条件で様々な系統の植物のバイオマスを驚くほど向上させるほか、光合成効率上昇させ、生育速度を高めた。また、バチルススブチリスBacillussubtilisFB17を植物に投与すると、植物のリグニン濃度が低下しており、これはバイオエネルギーの分野で重要な利点となり得る。リグニンは、植物バイオマスをバイオ燃料に変換する際の大きな障害の1つであるためである。米植物では、バチルススブチリスBacillussubtilisFB17は、米の鉄濃度を驚くほど上昇させ、さらに世界中で米作物をだめにする病原真菌、イネいもち病の増殖を減弱させることも示されている。本発明は、様々な植物、特にトウモロコシ植物、ダイズ植物、および米植物などの作物植物のバイオマスを増加させる、乾燥耐性を向上させる、リグニン含有量を減少させる、種子発芽を促進する、鉄濃度を上昇させる、および病原体に対する耐性を向上させる方法を提供する。本発明はまた、バチルススブチリスBacillussubtilisFB17を含む農業用担体および種子コーティングを提供する。本発明の実施形態は、植物のバイオマスをより多く生産する方法であって、未処理植物と比較して植物のバイオマスをより多く生産するのに効果的な量でバチルススブチリスBacillussubtilisFB17を植物、植物の種子、または植物もしくは種子の周囲の土壌に投与することを含む方法を提供する。本明細書で使用する場合、植物のバイオマスとは、植物の物質の全質量をいう。他に記載がない限り、バイオマスは、地上バイオマスすなわち、以下に限定されるものではないが、茎、葉、および/または穀粒など空中バイオマスおよび地下バイオマスすなわち、根の両方を含む。バチルススブチリスBacillussubtilisFB17を投与した植物のバイオマスは、公知の方法により測定することができる。一実施形態では、植物のバイオマスをグラム単位の植物の乾燥重量DWにより測定する。バチルススブチリスBacillussubtilisFB17を投与した植物のバイオマスは、バチルススブチリスBacillussubtilisFB17の植物への投与後、約7日~約100日、約10日~約75日、または約15日~約35日の時点で測定してもよい。あるいは、バチルススブチリスBacillussubtilisFB17を投与した作物植物のバイオマスは、植物を収穫してその穀粒または農産物を集める時点で、すなわち、トウモロコシ、ダイズまたはトマト植物などの成熟した作物植物を田畑から集める時点で測定してもよい。一例を挙げると、本発明の方法に従いバチルススブチリスBacillussubtilisFB17を投与した作物植物は、グラム単位の乾燥重量で測定する場合、未処理植物より少なくとも約1、約5~約200、約5~約100、約7.5~約75、約15~約60、または約30~約55多い量で地上および地下の全バイオマスの量を多く生産する。一実施形態では、1つの方法は、バチルススブチリスBacillussubtilisFB17の投与後、未処理植物より約5~約100多い量で植物のバイオマスをより多く生産するのに効果的な量で、土壌に種子を播く前にバチルススブチリスBacillussubtilisFB17を植物の種子に投与することを含む。たとえば、図4に図示したように、バチルススブチリスBacillussubtilisFB17で処理したトウモロコシでは、処理から15日後、未処理トウモロコシと比較して空中および根のバイオマスが約28増加することが観察された。本発明の別の実施形態は、植物の乾燥耐性を高める方法であって、未処理植物と比較して植物の乾燥耐性を高めるのに効果的な量でバチルススブチリスBacillussubtilisFB17を植物、植物の種子、または植物もしくは種子の周囲の土壌に投与することを含む方法を提供する。乾燥とは、土壌水分を枯渇させ、植物を害するだけの期間降雨がないか、または灌漑が行われないことをいう。植物の水分喪失が植物の根の吸水能力を上回る場合、および通常の植物のプロセスを阻害するのに十分に植物の含水量が減少する場合に乾燥ストレスが生じる。植物は、生育を停止し、光合成および水の使用を抑えるため他の植物のプロセスを抑制することにより水不足に対応する。本明細書で使用する場合、乾燥耐性とは、水の非存在下での植物の1日の生育速度、たとえば、未処理植物と比較してバチルススブチリスBacillussubtilisFB17を接種した植物のバイオマスが増加した1日のグラム数をいう。たとえば、図19に図示したように、水の非存在下でバチルススブチリスBacillussubtilisFB17で処理したトウモロコシ植物の種子は、処理から15日後、未処理植物と比較して1日の生育速度が約37.5高まった。一実施形態では、1つの方法は、土壌に種子を播く前に、バチルススブチリスBacillussubtilisFB17の投与後、未処理植物より少なくとも約10高く植物の乾燥耐性を高めるのに効果的な量で、前記バチルススブチリスBacillussubtilisFB17を植物、植物の周囲の土壌、または植物の種子に投与することを含む。本発明の別の実施形態は、植物のリグニン濃度を低下させる方法であって、未処理植物と比較して植物のリグニン濃度を低下させるのに効果的な量でバチルススブチリスBacillussubtilisFB17を植物、植物の種子、または植物もしくは種子の周囲の土壌に投与することを含む方法を提供する。リグニン濃度は、公知の方法により測定することができる。たとえば、図20に図示したように、バチルススブチリスBacillussubtilisFB17で処理した植物は、未処理植物で観察された木化細胞の数が約46~約64の減少を示した。リグニンは植物に不可欠な成分であり、植物細胞壁内、および植物細胞の間に見られる。リグニンは、植物バイオマスをバイオ燃料に変換する際の大きな障害の1つである。現在、もう1つの植物成分であるセルロースが、バイオ燃料の主な供給源である。セルロースはアルコールに発酵させやすいのに対し、リグニンは既存の発酵プロセスを用いて変換しないため、発酵性糖の抽出を難しくしている。したがって、リグニンの濃度が低い植物を生産することは有益である。本発明は、本発明の方法のいずれかによりバチルススブチリスBacillussubtilisFB17を投与した植物のバイオマスのいずれかたとえば、植物の全バイオマスまたは植物のバイオマスの任意の一部をバイオ燃料に変換することにより生産されたバイオ燃料を提供する。バチルススブチリスBacillussubtilisFB17を投与した植物のバイオマスは、植物の糖成分の発酵によるなど任意の公知の方法によりバイオ燃料に変換することができる。本発明の別の実施形態は、植物の種子発芽率を高める方法であって、未処理植物と比較して植物の種子発芽を促進するのに効果的な量でバチルススブチリスBacillussubtilisFB17を植物、植物の種子、または植物もしくは植物の種子の周囲の土壌に投与することを含む方法を提供する。たとえば、図16に図示したように、バチルススブチリスBacillussubtilisFB17による投与後、トマト植物およびトウモロコシ植物で総発芽率の上昇が観察された。本発明の別の実施形態は、植物、特に米植物の鉄濃度を上昇させる方法であって、未処理植物と比較して植物の鉄濃度を上昇させるのに効果的な量でバチルススブチリスBacillussubtilisFB17を植物、植物の種子、または植物もしくは種子の周囲の土壌に投与することを含む方法を提供する。鉄欠乏症は、ヒトの最も一般的な微量栄養素欠乏症の1つであり、かつ米は世界の人口の大部分にとって最も重要な主食であるため、本発明の方法により生産される米植物は、世界中で重要な栄養効果をもたらすことができる。バチルススブチリスBacillussubtilisFB17を投与した植物の鉄濃度は、誘導結合プラズマ発光分光分析法ICP-AES、誘導結合プラズマ質量分析法ICP-MS、または他の標準的な方法など公知の方法により測定することができる。一実施形態では、植物の乾燥重量1キログラム当たり鉄のミリグラム数により植物の鉄濃度を測定する。図22に図示したように、FB17で処理した米植物では、植物の乾燥重量1kg当たりの鉄のmgで測定すると、未処理植物と比較して鉄含有量が約81増加することが観察された。本発明に使用するのに好適な米植物として、オリザサティバOryzasativa、オリザグラベリマOryzaglaberrima、およびこれらのすべての亜種および品種が挙げられる。バチルススブチリスBacillussubtilisFB17を投与した米植物の鉄濃度は、米を収穫してその穀粒または農産物を集める時点で、すなわち、成熟した米粒を田畑から集める時点で測定してもよい。あるいは、バチルススブチリスBacillussubtilisFB17を投与した米植物の鉄濃度は、たとえば、バチルススブチリスBacillussubtilisFB17を米植物に投与してから約1週間~約5ヶ月、好ましくは約3ヶ月の間の時点で測定してもよい。本発明の方法に従いバチルススブチリスBacillussubtilisFB17を投与した米植物は、たとえば、米植物の地上および地下バイオマスの乾燥重量1グラム当たりの鉄のグラム数で測定すると、鉄の量をより多く生産する。一例を挙げると、本発明の方法に従いバチルススブチリスBacillussubtilisFB17を投与した米植物は、未処理植物より少なくとも約5、約10~約200、約25~約150、約50~約100、約70~約90、約75~約85、または約80多い量で、米植物の地上および地下バイオマス乾燥重量当たりの鉄の量を多く生産する。たとえば、一実施形態では、1つの方法は、土壌に米の種子を播く前に、バチルススブチリスBacillussubtilisFB17の投与後、未処理植物より少なくとも約25高く米植物の鉄濃度を高くするのに効果的な量で前記バチルススブチリスBacillussubtilisFB17を米の種子に投与することを含む。本発明の別の実施形態は、病原真菌による植物の感染を阻害する方法であって、未処理植物と比較して病原真菌による植物の感染を阻害するのに効果的な量でバチルススブチリスBacillussubtilisFB17を植物、植物の種子、または植物もしくは種子の周囲の土壌に投与することを含む方法を提供する。植物の例として、米の品種日本晴Nipponbareなどの米植物およびオオムギ植物が挙げられる。特定の実施形態では、本発明は、病原真菌による米植物の感染症、特にイネいもち病を阻害する方法であって、未処理米植物と比較して病原真菌による米植物の感染症を阻害するのに効果的な量でバチルススブチリスBacillussubtilisFB17を米植物、米植物の種子、または米植物もしくは種子の周囲の土壌に投与することを含む方法を提供する。本明細書で使用する場合、イネいもち病とは、植物病原性真菌plant-pathogenicfungusマグナポルテグリセアMagnaporthegriseaまたはマグナポルテオリザエMagnaportheoryzaeをいう。イネいもち病の症状として、植物のあらゆる部分、特に葉など植物の空中部、すなわち地上部に発生する病変または斑たとえば、白色または灰色であることがあるがある。本明細書で使用する場合、感染症を阻害するとは、真菌感染症の軽減、たとえば、未処理植物と比較して米植物の空中部分の病変数の減少、または病変の一部または全部の大きさの縮小で判定した場合、米植物の真菌感染症を軽減することをいう。たとえば、特定の実施形態では、イネいもち病が原因の米植物の病変数を、未処理米植物と比較して約5~約100、約10~約80、約20~約60または約25~約45減少させるのに効果的な量で、バチルススブチリスBacillussubtilisFB17を米植物、米植物の種子、または米植物もしくは種子の周囲の土壌に投与する。どのような理論にも拘泥するわけではないが、B.スブチリスB.subtilisFB17は、M.オリザエM.oryzaeの増殖を減弱させるまたは抑制する揮発性抗真菌化合物を生成すると考えられる。特定の実施形態では、イネいもち病の増殖および米植物の感染症を阻害するため、約1×107CFU/種子~約1×109CFU/種子、一層好ましくは約1×108CFU/種子の量でバチルススブチリスBacillussubtilisFB17を米の種子に投与し、その後種子を土壌に播く。本明細書で使用する場合、未処理植物とは、バチルススブチリスBacillussubtilisFB17を投与していないこと以外は、本発明の方法に従いバチルススブチリスBacillussubtilisFB17を投与した植物と同じ種で、実質的に同じ条件下たとえば、同じ期間、同じ気候、同じ材料を用い同じ方法により栽培し、同じ方法により測定されたバイオマス、乾燥耐性、リグニン濃度、鉄濃度、真菌感染、および他の特徴を持つで生育させた植物をいう。本明細書で使用する場合、未処理植物と比較した、バチルススブチリスBacillussubtilisFB17を投与した植物の特徴、たとえばバイオマスの増加、乾燥耐性の向上、リグニン濃度の低下、鉄濃度の上昇または真菌感染症の軽減とは、それぞれ同じ時点で測定したバイオマスの増加、乾燥耐性の向上、リグニン濃度の低下、鉄濃度の上昇または真菌感染症の軽減をいう。本明細書に記載の方法のある種の実施形態では、バチルススブチリスBacillussubtilisFB17の接種菌液約1ml/kgすなわち、SmartSpecBioRad分光光度計を用いて測定した波長600nmの光学密度OD0.5の、LB培地で一晩増殖させたバチルススブチリスBacillussubtilisFB171ml/kg~約50ml/kg、好ましくは約5ml/kg~約25ml/kg、一層好ましくは約10ml/kg~約15ml/kg、最も好ましくは約12.5ml/kgの量でバチルススブチリスBacillussubtilisFB17を種子に投与する。代替の実施形態では、約1×106CFU/種子~約1×109CFU/種子、一層好ましくは約1×107CFU/種子~約1×108CFU/種子の量でバチルススブチリスBacillussubtilisFB17を種子に投与する。本発明の方法は、バイオマスの増加、乾燥耐性の向上、リグニン含有量の減少、種子発芽の促進、鉄濃度の上昇、および病原体に対する耐性の向上を目的として多くの種類の植物およびその種子または周囲の土壌を処理するために使用してもよい。植物として、単子葉植物または双子葉植物が挙げられる。植物としては特に、トウモロコシ、ダイズ、トマト、米またはオオムギなどの作物が挙げられる。本発明の方法により処理してもよい植物の別の例としては、シロイヌナズナArabidopsisthalianaおよびジニア属Zinniaのほか、バイオエネルギー作物植物、すなわち、セイヨウヤマカモジBrachypodiumdistachyonなどバイオエネルギー源として現在使用されている、または使用される可能性がある植物たとえば、バイオ燃料の生産に有用な植物が挙げられる。本発明によれば、バチルススブチリスBacillussubtilisFB17は、根、種子または葉の接種によるなど、植物の全部または一部を処理する任意の公知の方法により植物に投与してもよい。たとえば、バチルススブチリスBacillussubtilisFB17は、土壌に種子を播く前に葉および茎など植物の空中部分、植物の根、植物の種子に投与しても、または植物もしくは植物の種子の周囲の土壌に投与してもよい。投与の方法には、ドレンチングdrenching、噴霧、コーティング、注射または当業者に公知の他の方法がある。本明細書で使用する場合、バチルススブチリスBacillussubtilisFB17を投与するとは、1回投与、反復投与すなわち、バチルススブチリスBacillussubtilisFB17を1回より多く投与する、または連続投与のいずれかをいう。バチルススブチリスBacillussubtilisFB17は、植物の生活環の任意の時点たとえば、発芽前または後で投与してもよい。たとえば、バチルススブチリスBacillussubtilisFB17は、土壌に種子を播く前、および発芽の前に植物の種子に投与してもよい。あるいは、バチルススブチリスBacillussubtilisFB17は、発芽が生じた後に植物、植物の種子、または植物の周囲の土壌に投与してもよい。種子をバチルススブチリスBacillussubtilisFB17で処理したら、土壌に播き、植物を生育させる従来の方法を用いて栽培すればよい。本発明の実施形態によれば、バチルススブチリスBacillussubtilisFB17は、植物、植物の種子または土壌に単独投与しても、または他の材料との混合物として投与してもよい。たとえば、バチルススブチリスBacillussubtilisFB17は、追加の添加剤または材料をまったく含まない増殖培地中のバチルススブチリスBacillussubtilisFB17から本質的になる組成物として投与してもよい。あるいは、バチルススブチリスBacillussubtilisFB17は、増殖培地中のバチルススブチリスBacillussubtilisFB17、水などの担体、水溶液または粉末を含む組成物として投与してもよい。増殖培地、担体、水溶液または粉末は、殺虫剤または殺菌剤など追加の添加剤を含んでもよい。あるいは、バチルススブチリスBacillussubtilisFB17は、異なる時間に適用される他の添加剤または材料と一緒に個別に投与してもよい。ある種の実施形態では、バチルススブチリスBacillussubtilisFB17を、約1ml/kgすなわち、SmartSpecBioRad分光光度計を用いて測定した波長600nmの光学密度OD0.5の、LB培地で一晩増殖させたバチルススブチリスBacillussubtilisFB171ml/kg~約50ml/kg、好ましくは約5ml/kg~約25ml/kg、一層好ましくは約10ml/kg~約15ml/kg、最も好ましくは約12.5ml/kgの量で、バチルススブチリスBacillussubtilisFB17を含む組成物として投与する。代替の実施形態では、バチルススブチリスBacillussubtilisFB17を約1×106CFU/種子~約1×109CFU/種子、一層好ましくは約1×107CFU/種子~約1×108CFU/種子の量で含む組成物としてバチルススブチリスBacillussubtilisFB17を投与する。本発明はさらに、播く前に植物たとえば、根、植物の周囲の土壌、または種子に適用できる、バチルススブチリスBacillussubtilisFB17を含む農業用担体と、植物種子に適用できる、バチルススブチリスBacillussubtilisFB17を含む種子コーティングとを提供する。本発明はまた、種子の全部または一部がバチルススブチリスBacillussubtilisFB17を含むコーティングまたは薄膜を有するように、バチルススブチリスBacillussubtilisFB17でコートした植物の種子、好ましくは作物植物の種子たとえば、トウモロコシ植物、ダイズ植物、米植物、トマト植物、またはセイヨウヤマカモジBrachypodiumdistachyonなどのバイオエネルギー作物植物の種子を提供する。農業用担体は、バチルススブチリスBacillussubtilisFB17接種菌液約1ml/kgすなわち、SmartSpecBioRad分光光度計を用いて測定した波長600nmの光学密度OD0.5の、LB培地で一晩増殖させたバチルススブチリスBacillussubtilisFB171ml/kg~約50ml/kg、約5ml/kg~約25ml/kg、約10ml/kg~約15ml/kg、または約12.5ml/kgの量でバチルススブチリスBacillussubtilisFB17を含んでもよい。種子コーティングは、約1×106CFU/種子~約1×108CFU/種子、一層好ましくは約1×107CFU/種子の量でバチルススブチリスBacillussubtilisFB17を含んでもよい。農業用担体および種子コーティングは各々、追加の添加剤または材料をまったく含まない増殖培地中のバチルススブチリスBacillussubtilisFB17から本質的になっていてもよい。あるいは、農業用担体および種子コーティングは各々、水などの増殖培地、水溶液または粉末中にバチルススブチリスBacillussubtilisFB17を含んでもよい。増殖培地、水溶液または粉末は、殺虫剤または殺菌剤など追加の添加剤を含んでもよい。本発明には、基本的用途と応用的用途との両方がある。本明細書に記載の方法を使用すれば、広い意味でたとえば、バイオ燃料に使用される代替植物種で、あるいは、作物植物の収穫可能性に影響を与えるためバイオマスを増加させ、乾燥耐性を向上させることができる。これらの方法は、遺伝子導入アプローチと比較して遺伝子の同定、遺伝子導入系の構築および特徴付けの時間を必要とせずに任意の植物に直ちに適用でき、導入遺伝子の使用に関する規制上および社会上の問題を伴わない。本明細書に記載の方法は、伝統的な栽培法化学肥料および水の利用の使用と比較して資源消費、および栽培者の労働がより少なく、環境により好ましい。さらに、化学肥料の利用は、急速で弱々しい生育を誘導することにより作物病害感受性を高めることが知られている一方、本方法で生育させる植物は、病害感受性が高まることが示されていない。FB17は、種子の処理に使用される他の根圏細菌と比較して、有益な結果を得るのに低菌量接種菌液を必要とする。最後に、こうした方法は有機農法との適合性があるのに対し、上述の他の方法たとえば、化学肥料の利用は適合性がない。B.スブチリスB.subtilis株FB17の寄託物は、DelawareBiotechnologyInstitute,15Innovationway,Room145,Newark,DE19711で2010年3月1日より前から入手することができる。また、B.スブチリスB.subtilis株FB17は、アメリカンタイプカルチャーコレクションATCC,10801UniversityBoulevard,Manassas,Va.20110-2209USAに寄託される。このATCC寄託物の利用は、本出願の係属中、特許商標庁長官CommissionerofPatentsandTrademarksおよび長官によりその権利を有すると決定された者に対して、請求に応じて可能となる。寄託物は、30年の期間、または直近の請求から5年間、または特許の権利行使可能期間のいずれか長い期間、公的寄託機関であるATCC寄託機関で保存され、その期間中に生育不能なった場合、再寄託される。寄託物またはその子孫は、本出願の副本が出願されている国の外国特許法の定めるところにより利用できる。さらに、本寄託物は、微生物の寄託物に関するブダペスト条約の規定に従い保存され、一般に提供される、すなわち、本寄託物は、寄託物のサンプルの分譲に関する直近の請求から少なくとも5年の期間、さらにどのような場合でも、寄託日から少なくとも30年の期間、または発行する可能性がある、培養物を開示する任意の特許の権利行使可能期間、生存可能で汚染されない状態を保つのに必要な十分な注意を払って保存される。以下の例は、本発明をより詳細に記載するために提供するものであり、本発明を説明することを意図しており、本発明を限定するものではない。下記の図の一部に記載されたUD10-22とは、バチルススブチリスBacillussubtilisFB17をいう。実施例1セイヨウヤマカモジBrachypodiumdistachyon植物およびトウモロコシ植物を発芽させ、21日間生育させた。5日に1回3回、ポットごとにOD0.5のB.スブチリスB.subtilisFB175mlを加えた。対照では、OD0.5の大腸菌E.coliOP505mlをポットごとに加えた。FB17およびOP50をLB培地で一晩生育させ、SmartSpecBioRad分光光度計を使用して波長600nmの光学密度ODを得た。最終処理から10日後、植物を解析した。本明細書のすべての実験に記載される対照とは、細菌で処理しなかったか、または大腸菌E.coliOP50で処理した植物をいう。B.スブチリスB.subtilisFB17、細菌の対照大腸菌E.coli、または模擬処理mocktreatmentで処理したセイヨウヤマカモジBrachypodiumdistachyonBd2-1植物およびトウモロコシ植物を、処理後30日間、標準的な条件22~25°C、湿度60、明期16時間/暗期8時間の明暗周期で4×4インチのポットにて生育させた。エネルギー作物セイヨウヤマカモジB.distachyonの空中および根のバイオマスは、FB17処理により増加した。図1は、FB17で処理したセイヨウヤマカモジB.distachyonのバイオマスが統計学的レベルで増加したことを示す。図2は、FB17で処理したセイヨウヤマカモジB.distachyonで観察された光合成効率の向上を図示する。FB17で処理したセイヨウヤマカモジB.distachyonは、対照より多くのクロロフィルと総カロエテノイドとを含んでおり、植物の健康状態が健全であることを示す。図3は、セイヨウヤマカモジB.distachyonの根の周囲の土壌から回収されたFB17の量を示す。図から、FB17は、大腸菌E.coliと比較してセイヨウヤマカモジB.distachyonの根に非常に強く関連しており、FB17の根圏細菌の本来の性質を示唆することが明らかにされる。また、トウモロコシ植物も、B.スブチリスB.subtilisFB17、細菌の対照大腸菌E.coliOP50、または模擬処理により処理してから30日間の生育後、空中および根のバイオマスの増加を示した。実施例2シロイヌナズナArabidopsisthalianaの種子を発芽させ、21日間生育させた。5日に1回3回、OD0.5のB.スブチリスB.subtilisFB175mlをポットごとに加えた。対照では、OD0.5の大腸菌E.coliOP505mlをポットごとに加えた。FB17およびOP50をLB培地で一晩生育させ、SmartSpecBioRad分光光度計を使用して波長600nmの光学密度ODを得た。最終処理から10日後、植物を25°C、湿度40で4週間乾燥に供したすなわち、水を加えなかった。処理から30日後、未処理植物のstaygreen表現型の喪失をFB17で処理した植物と比較して乾燥を評価したところ、FB17がアラビドプシス属Arabidopsisの乾燥耐性を向上させることが示唆された。実施例3B.スブチリスB.subtilisFB17の種子処理は、トウモロコシMo17、CML258、CML10、ジニア属Zinnia、およびセイヨウヤマカモジBrachypodiumdistachyonのバイオマスの向上を促進する。トウモロコシMo17、CML258、CML10、ダイズWill-82、トマトSolanumlycopersicum、ジニア属Zinnia、およびセイヨウヤマカモジBrachypodiumdistachyonエネルギー作物モデルのバイオマスの向上に対するB.スブチリスB.subtilisFB17の作用を試験するため、植物種ごとに50の種子n=50を、B.スブチリスB.subtilisFB17約1×107cfu/種子、またはSmartSpecBioRad分光光度計を用いて測定した波長600nmの光学密度OD0.5の、LB培地で一晩増殖させたバチルススブチリスBacillussubtilisFB1712.5ml/kgで種子処理した。種子処理後、発芽およびバイオマスの研究のため、混合土壌を含むポット4×4インチに種子を一つずつ播種した。興味深いことに、B.スブチリスB.subtilisFB17の種子処理は、試験した全作物種で根およびシュートの生育を促進した。測定値は、処理から15日後に得た。種子処理した植物が根のバイオマスの増加を促進し、その結果、根の長さが増加するよりもむしろ根系密度が高くなった。根系密度が高くなったのは側根および根毛が増加し、より多くの水および栄養素を取り込めるようになったことに起因する。トウモロコシZeamaysvar.CML258は、空中バイオマスが対照より約16増加した。トウモロコシZeamaysvar.CML10は、空中バイオマスが対照より約9増加した。トウモロコシZeamaysvar.Mo-17は、空中バイオマスが対照より約38増加した。ブラキポディウムBrachypodiumは、空中バイオマスが対照より約40増加した。トウモロコシZ.maysMO17の場合、空中および根の総バイオマスが対照より約28という有意な増加が観察された。図4は、B.スブチリスB.subtilisFB17で処理した植物のバイオマスの総増加率を図示する。図5は、B.スブチリスB.subtilisFB17で種子処理したMo-17植物における根およびシュートのバイオマスの増加を示す定量データを図示する。図6は、B.スブチリスB.subtilisFB17で種子処理したバイオエネルギー作物セイヨウヤマカモジBrachypodiumdistachyon遺伝子型Bd2-1植物における葉数の増加を示す定量データを図示する。図7は、B.スブチリスB.subtilisFB17で種子処理したバイオエネルギー作物セイヨウヤマカモジBrachypodiumdistachyon遺伝子型Bd2-1植物における根およびシュートのバイオマスの増加を示す定量データを図示する。図8および図9は、B.スブチリスB.subtilisFB17で種子処理したジニアエスピーZinniasp.レッドスパイダーにおける根およびシュートのバイオマスの増加を示す定量データを図示する。実施例4B.スブチリスB.subtilisFB17の種子処理は、トウモロコシおよびトマトの光合成効率を促進する。トウモロコシMo17、CML258、CML10、ダイズWill-82、トマトSolanumlycopersicum、ジニア属Zinnia、およびブラキポディウムBrachypodiumエネルギー作物モデルの光合成効率に対するB.スブチリスB.subtilisFB17の作用を試験するため、植物種ごとに50の種子n=50を、B.スブチリスB.subtilisFB1712.5ml/kgまたは1e7cfu/種子で種子処理した。処理から15~32日後の葉を収穫し、総クロロフィル含有量について解析した。結果から、図10および図11に図示したように、B.スブチリスB.subtilisFB17を接種したトウモロコシ植物およびトマト植物トマトおよび外来種のトウモロコシCML258およびCML10は未処理サンプルと比較してクロロフィルおよびカロテノイド含有量の増加を示すことが明らかになった。総クロロフィル値の増加は、CML258およびCML10で見られたように成長力およびバイオマスの増加を促進する可能性がある。B.スブチリスB.subtilisFB17を種子接種したトマトの総クロロフィル含有量は、約14増加した。より一層顕著なのは外来種のトウモロコシCML258およびCML10であり、それぞれ約87および約72増加した。総クロロフィル含有量は増加しているものの、そのことは、総カロテノイド含有量も増加した値に対応することを意味するものではない。トマトおよびジニア属Zinniaは、B.スブチリスB.subtilisFB17を接種して未処理種子と比較すると、総カロテノイドの割合が有意に低下した。トウモロコシCML258およびCML10は総カロテノイドの割合が有意に増加した一方、ダイズ、トウモロコシMo17、およびブラキポディウムBrachypodiumは、処理した種子と未処理の種子との間で統計学的に有意な差を示さなかった。図12は、B.スブチリスB.subtilisFB17で種子処理したMo-17植物における光合成効率の上昇を示す定量データを図示する。図13は、B.スブチリスB.subtilisFB17で種子処理したバイオエネルギー作物セイヨウヤマカモジBrachypodiumdistachyon遺伝子型Bd2-1植物における光合成効率の上昇を示す定量データを図示する。図14は、B.スブチリスB.subtilisFB17で種子処理したジニアエスピーZinniasp.レッドスパイダーにおける光合成効率の上昇を示す定量データを図示する。図15は、B.スブチリスB.subtilisFB17で種子処理した外来トウモロコシCML10およびCML258における光合成効率の上昇を示す定量データを図示する。実施例5B.スブチリスB.subtilisFB17の種子処理は、トウモロコシ植物およびトマト植物の発芽を促進する。トウモロコシMo17、CML258、CML10、ダイズWill-82、トマトSolanumlycopersicum、ジニア属Zinnia、およびブラキポディウムBrachypodiumエネルギー作物モデルの発芽増加率に対するB.スブチリスB.subtilisFB17の作用を試験するため、植物種ごとに50の種子n=50を、B.スブチリスB.subtilisFB1712.5ml/kgまたは1e7cfu/種子で種子処理した。最終的な発芽率を播種した日から8日後にスコア化した。結果から、B.スブチリスB.subtilisFB17処理は、図16に図示したようにトマトおよびトウモロコシの発芽反応を統計学的に有意に促進することが明らかになった。B.スブチリスB.subtilisFB17で処理したトマトの種子および外来種トウモロコシCML258はそれぞれ発芽率が5.9および14上昇した。B.スブチリスB.subtilisFB17の種子処理は、試験した全作物種について中立およびプラスの作用を有した。種子処理を適用した場合、発芽率に対するマイナスの反応は、統計学的に認められなかった。実施例6トウモロコシMo17、CML258、CML10、ダイズWill-82、トマトSolanumlycopersicum、ジニア属Zinnia、およびブラキポディウムBrachypodiumエネルギー作物モデルにおけるB.スブチリスB.subtilisFB17の作用を試験するため、植物種ごとに50の種子n=50を、B.スブチリスB.subtilisFB171e7cfu/種子またはSmartSpecBioRad分光光度計を用いて測定した波長600nmの光学密度OD0.5の、LB培地で一晩増殖させたバチルススブチリスBacillussubtilisFB1712.5ml/kgで種子処理した。種子処理後、種子を一つずつポット4×4インチ播種した。測定は、処理から15日後に行った。図17は、B.スブチリスB.subtilisFB17で処理後のトウモロコシZeamaysの生育速度を図示する。図18は、B.スブチリスB.subtilisFB17で処理した植物の保水能力を図示する。FB17処理後、総保水能力および保水率が、トマト2.1およびトウモロコシZ.maysMO173.5で有意に高まることが観察された。図19は、B.スブチリスB.subtilisFB17で処理した植物の乾燥耐性を図示する。MO17の生育速度がFB17処理後、乾燥処理下で有意に高まることが観察された非水処理対照に対して37.5増。図20は、B.スブチリスB.subtilisFB17の種子処理がトウモロコシのリグニン含有量を減少させることを図示する。トウモロコシZ.maysではFB17処理後、総リグニン含有量が有意に減少することが観察されたMO17で約46減少;CML10で約64減少、およびCML58で約49減少。実施例7図21は、B.スブチリスB.subtilisFB17で処理した米植物オリザサティバOryzasativa日本晴Nipponbareの空中および根のバイオマスが接種から60日後に増加することを図示する。LBで一晩生育させたFB17の培養液を用いて108細胞/mlの接種菌液を作製した。FB17の補充には、水耕法で生育させ4週齢の米植物品種日本晴Nipponbareを使用した。B.スブチリスB.subtilisFB17を投与した米植物は、未処理米植物と比較して約200のバイオマスの増加を示した。実施例8バチルススブチリスBacillussubtilisFB17が米の根に定着するかどうかを評価するため、米植物品種日本晴NipponbareにバチルススブチリスBacillussubtilisFB17を接種し、接種から96時間後に米植物の根を共焦点走査型レーザー顕微鏡により観察した。観察結果から、この有益な根圏細菌バチルススブチリスBacillussubtilisFB17は、植物体にバイオフィルムを形成することが確認された。特に、データからは、バチルススブチリスBacillussubtilisFB17が処理の96時間後に米の根に効率的に定着することが示唆されることから、米の根が有益な微生物の定着を支持することが示される。米植物の根圏細菌処理が気孔開口に何らかの変化を与えるかどうかを評価するため、出願人らは、根圏細菌で処理した米植物を解析した。結果から、バチルススブチリスBacillussubtilisFB17で米を根圏細菌処理すると、処理した米植物品種日本晴Nipponbareの気孔開口が大きく減少することが明らかになった。バチルススブチリスBacillussubtilisFB17処理の場合、バチルススブチリスBacillussubtilisFB17の添加から1週後に孔辺細胞が観察された。これらの結果から、B.スブチリスB.subtilisFB17バチルススブチリスBacillussubtilisFB17は、シロイヌナズナA.thalianaおよび米の両方で証明されたように、単子葉植物および双子葉植物の両方で一般的な気孔閉鎖反応を与えることが示唆される。バチルススブチリスBacillussubtilisFB17がイネいもち病の増殖を減弱させるかどうかを評価するため、出願人らは、マグナポルテオリザエMagnaportheoryzaeをバチルススブチリスBacillussubtilisFB17培養液に曝露した。定性コンパートメントプレートqualitativecompartmentplateおよび定量データから、バチルススブチリスBacillussubtilisFB17曝露真菌培養液での放射状の増殖の低下により示されたように、バチルススブチリスBacillussubtilisFB17はM.オリザエM.oryzaeの増殖を減弱させることが示された。対照TYおよびLBとの比較から、処理しない場合に病原体が増殖すると考えられる程度が明らかにされる。表1に示すように、バチルススブチリスBacillussubtilisFB17はインビトロでM.オリザエM.oryzaeの増殖を約25抑制した。これらの結果から、B.スブチリスB.subtilisFB17は、M.オリザエM.oryzaeの増殖を減弱させるか、または阻害することができる揮発性抗真菌化合物を生成することが示唆される。バチルススブチリスBacillussubtilisFB17は、米およびオオムギでマグナポルテオリザエMagnaportheoryzaeに対する全身抵抗性を誘導した。M.オリザエM.oryzaeに曝露された米植物およびオオムギ植物はどちらも、表2に示すように対照と比較してFB17で処理した植物で米の葉およびオオムギの子葉の病変形成がそれぞれ抑制されたいもち病に典型的なダイヤモンド状の病変が葉に少なくとも1つ存在する場合に感染したと定義した。実施例9バチルススブチリスBacillussubtilisFB17が米の鉄強化を促進するかどうかを評価するため、本出願人らは、誘導結合プラズマ発光分光分析法ICP-AESを用いて、バチルススブチリスBacillussubtilisFB17を補充した植物の米の葉、根、および穀粒における全鉄含有量を解析した。結果から、バチルススブチリスBacillussubtilisFB17を米に補充すると、植物体に鉄が集まりやすくなる、すなわち、必須元素の鉄が、植物の生育および成長に利用される植物に積極的に取り込まれることが明らかになった。図22に図示したように、植物の乾燥重量1kg当たりの鉄のmg数で測定した場合、FB17で処理した米植物では未処理対照と比較して鉄含有量が81増加することが観察された図1に示したようにUD1022とはバチルススブチリスBacillussubtilisFB17をいう。したがって、バチルススブチリスBacillussubtilisFB17を植物、特に米植物に投与すると、食物中の鉄濃度の上昇により食物の栄養価を大きく高めることができる。図23は、上述の複数の植物種の様々な特色に対するB.スブチリスB.subtilisFB17の作用をまとめたものである。本発明について特定の実施形態と共に記載してきたが、特許請求の範囲に記載の本発明は、こうした特定の実施形態に必要以上に限定されるべきものではないことを理解すべきである。実際、本発明の記載された組成物および方法の様々な修正および変形は、当業者には明らかであり、添付の特許請求の範囲の範囲内にあることを意図している。"