"培養細胞が互いに接着している細胞の三次元構造体であって、前記培養細胞は、前記培養細胞の表面全体が接着膜で被覆された被覆細胞を含み、前記接着膜を介して前記被覆細胞と前記培養細胞とが互いに接着している、細胞の三次元構造体。前記接着膜は、前記第1の物質を含む膜と、前記第1の物質とは異なる第2の物質を含む膜とが積層された膜である、請求項1に記載の三次元構造体。前記接着膜が、前記第1の物質を含む膜と前記第2の物質を含む膜とがそれぞれ複数積層された多層膜である、請求項2に記載の三次元構造体。前記第1、第2の物質が、分子量1千以上1千万以下の高分子である、請求項2又は3に記載の三次元構造体。前記第1の物質と前記第2の物質との組み合わせが、インテグリンが結合するアルギニン-グリシン-アスパラギン酸RGD配列を含む高分子と前記RGD配列を含む高分子と相互作用をする高分子との組み合わせである、請求項2乃至4いずれか1項に記載の三次元構造体。前記第1の物質と前記第2の物質との組み合わせが、フィブロネクチンとゼラチン、フィブロネクチンとヘパリン、及び、フィブロネクチンとデキストラン硫酸のいずれかである、請求項5に記載の三次元構造体。前記第1の物質と前記第2の物質との組み合わせが、正の電荷を有する高分子と、負の電荷を有する高分子との組み合わせである、請求項2乃至6いずれか1項に記載の三次元構造体。互いに接着している前記被覆細胞と前記培養細胞とが異なる種類の細胞である、請求項1乃至7いずれか1項に記載の三次元構造体。前記接着膜の厚みが1nm以上1×103nm以下である、請求項1乃至8いずれか1項に記載の三次元構造体。前記細胞の三次元構造体の厚みが10μm以上100μm以下である、請求項1乃至9いずれか1項に記載の三次元構造体。基材上に前記培養細胞が積層し、シート状の構造体を構築している、請求項1乃至10いずれか1項に記載の三次元構造体。前記培養細胞が、第一培養細胞と、前記第一培養細胞とは異なる第二培養細胞とを含み、前記被覆細胞が、前記第一培養細胞が前記接着膜で被覆された第一被覆細胞と、前記第二培養細胞が前記接着膜で被覆された第二被覆細胞とを含み、前記第一培養細胞と前記第一被覆細胞とが前記接着膜を介して互いに接着している第一の積層構造をなし、前記第二培養細胞と前記第二被覆細胞とが前記接着膜を介して互いに接着している第二の積層構造をなし、前記第一の積層構造上に前記第二の積層構造が積層されている、請求項1乃至11いずれか1項に記載の三次元構造体。前記第二の積層構造上に、さらに前記第一の積層構造が積層されている、請求項12に記載の三次元構造体。前記培養細胞が、第一培養細胞と、前記第一培養細胞とは異なる第二培養細胞とを含み、前記被覆細胞が、前記第一培養細胞が前記接着膜で被覆された第一被覆細胞と、前記第二培養細胞が前記接着膜で被覆された第二被覆細胞とを含み、前記第一被覆細胞と前記第二培養細胞とが前記接着膜を介して互いに接着し、前記第二被覆細胞と前記第一培養細胞とが前記接着膜を介して互いに接着している、請求項1乃至11いずれか1項に記載の三次元構造体。前記第一培養細胞が繊維芽細胞であり、前記第二培養細胞が血管内皮細胞である、請求項13又は14に記載の三次元構造体。前記第二培養細胞が、血管網を形成している、請求項15に記載の三次元構造体。培養細胞を互いに接着させて細胞の三次元構造体を製造する方法であって、前記培養細胞の表面全体が接着膜で被覆された被覆細胞を培養する工程を含み、前記被覆細胞を培養する前記工程において、前記接着膜を介して、前記被覆細胞と前記培養細胞とを互いに接着させる、細胞の三次元構造体を製造する方法。前記培養細胞の表面全体を前記接着膜で被覆して前記被覆細胞を作製する工程をさらに含み、前記被覆細胞を作製する工程は、第1の物質を含む膜で前記培養細胞を被覆する工程と、前記第1の物質を含む膜で被覆された前記培養細胞を、前記第1の物質とは異なる第2の物質を含む膜で被覆する工程と、を含む、請求項17に記載の三次元構造体を製造する方法。前記被覆細胞を作製する前記工程は、前記第2の物質で被覆された前記培養細胞をさらに前記第1の物質を含む膜で被覆する工程を含み、前記第1の物質を含む膜と前記第2の物質を含む膜とを交互に積層させることにより、前記培養細胞の表面全体を前記接着膜で被覆する、請求項18に記載の三次元構造体を製造する方法。前記被覆細胞を培養する前記工程において、基材上に前記被覆細胞を戴置して前記被覆細胞を培養する、請求項17乃至19いずれか1項に記載の三次元構造体を製造する方法。前記培養細胞が、第一培養細胞と、前記第一培養細胞とは異なる第二培養細胞とを含み、前記被覆細胞が、前記第一培養細胞が前記接着膜で被覆された第一被覆細胞と、前記第二培養細胞が前記接着膜で被覆された第二被覆細胞とを含み、前記被覆細胞を培養する前記工程において、前記接着膜を介して、前記第一培養細胞と前記第一被覆細胞とを接着させて、第一の積層構造を形成する第一の培養工程と、前記接着膜を介して、前記第二培養細胞と前記第二被覆細胞とを接着させて、前記第一の積層構造上に第二の積層構造を形成する第二の培養工程と、を含む、請求項17乃至20いずれか1項に記載の三次元構造体を製造する方法。前記第二の培養工程の後、さらに前記第一の培養工程を実行し、前記第二の積層構造上に、前記第一の積層構造を形成する、請求項21に記載の三次元構造体を製造する方法。前記培養細胞が、第一培養細胞と、前記第一培養細胞とは異なる第二培養細胞とを含み、前記被覆細胞が、前記第一培養細胞が前記接着膜で被覆された第一被覆細胞と、前記第二培養細胞が前記接着膜で被覆された第二被覆細胞とを含み、前記被覆細胞を培養する前記工程において、前記接着膜を介して、前記第一被覆細胞と前記第二培養細胞とを互いに接着させるとともに、前記第二被覆細胞と前記第一培養細胞とを互いに接着させる、請求項17乃至20いずれか1項に記載の三次元構造体を製造する方法。前記第一の培養細胞が繊維芽細胞であり、前記第二の培養細胞が血管内皮細胞である、請求項22又は23に記載の三次元構造体を製造する方法。前記被覆細胞を培養する前記工程の後、前記第二の培養細胞に血管網を形成させる組織化工程をさらに含む、請求項24に記載の三次元構造体を製造する方法。培養細胞を互いに接着させる接着膜を前記培養細胞に形成させるための接着成分と、前記接着成分で前記培養細胞の全体を被覆して被覆細胞を作製し、前記被覆細胞を培養するための使用説明書と、を含む、三次元構造体を製造するためのキット。請求項1乃至16いずれか1項に記載の三次元構造体の上にさらに培養細胞を積層させる、細胞の培養方法。請求項1乃至16いずれか1項に記載の三次元構造体を培養し、前記接着膜を介して接着した前記培養細胞と前記被覆細胞とを組織化させる、細胞の培養方法。請求項1乃至16いずれか1項に記載の三次元構造体を用いて薬物の細胞応答を評価する方法。しかしながら、非特許文献1に記載の技術では、細胞シートの剥離を必須とするため、細胞の形状を維持させつつ剥離するのが困難だった。そのため、複雑な形状の構造体を作製する方法に適していなかった。また、同一平面に異種細胞を組織化させることが困難だった。また、非特許文献2に記載の技術は、細胞層の厚みや三次元配置の制御が困難だった。特許文献1の技術では、薄い細胞層や複雑な三次元構造を有する組織を構築することができる。しかしながら、細胞層を一層ずつ培養して作製させる技術であるため、作製に長時間を要していた。また、同一平面内に多種細胞の配置をさせることが困難であるため、三次元配置のバリエーションに限界があった。本発明は上記事情に鑑みてなされたものであり、その目的とするところは、三次元配置のバリエーションが豊富な細胞組織を短時間で作製できる三次元構造体を提供することにある。本発明によれば、培養細胞が互いに接着している細胞の三次元構造体であって、前記培養細胞は、前記培養細胞の表面全体が接着膜で被覆された被覆細胞を含み、前記接着膜を介して前記被覆細胞と前記培養細胞とが互いに接着している、細胞の三次元構造体が提供される。また、本発明によれば、培養細胞を互いに接着させて細胞の三次元構造体を製造する方法であって、前記培養細胞の表面全体が接着膜で被覆された被覆細胞を培養する工程を含み、前記被覆細胞を培養する前記工程において、前記接着膜を介して、前記被覆細胞と前記被覆細胞から増殖した前記培養細胞とを互いに接着させる、細胞の三次元構造体を製造する方法が提供される。また、本発明によれば、培養細胞を互いに接着させる接着膜を前記培養細胞に形成させるための接着成分と、前記接着成分で前記培養細胞の全体を被覆して被覆細胞を作製し、前記被覆細胞を培養するための使用説明書と、を含む、三次元構造体を製造するためのキットが提供される。また、本発明によれば、上記の三次元構造体の上にさらに培養細胞を積層させる、細胞の培養方法が提供される。また、本発明によれば、上記の三次元構造体を培養し、前記接着膜を介して接着した前記培養細胞と前記被覆細胞とを組織化させる、細胞の培養方法が提供される。さらに、本発明によれば、上記の三次元構造体を用いて薬物の細胞応答を評価する方法が提供される。この発明によれば、培養細胞の表面全体が接着膜で被覆された被覆細胞を用いて細胞を培養する。これにより、個々の細胞に形成された接着膜同士が相互作用して、組織化することができる。したがって、一段階で同種又は異種の細胞の三次元構造体を作製することができるため、三次元配置のバリエーションが豊富な細胞組織を短時間で作製できる構造体が実現可能になる。本発明によれば、三次元配置のバリエーションが豊富な細胞組織を短時間で作製可能な三次元構造体を提供することができる。以下、本発明の実施の形態について、図面を用いて説明する。尚、すべての図面において、同様な構成要素には同様の符号を付し、適宜説明を省略する。第1の実施形態本実施の形態は、培養細胞が互いに接着している細胞の三次元構造体である。図1は、本実施の形態に係る三次元構造体の一例を示す模式的な断面図である。本実施の形態の三次元構造体を構成する培養細胞101には、培養細胞101の表面全体が接着膜102で被覆された被覆細胞103が含まれており、接着膜102を介して被覆細胞103と培養細胞101とが互いに接着している。具体的に、接着膜102は、培養細胞101同士を接着できる物質であれば制限されないが、第1の物質を含む膜102aと、第1の物質とは異なる第2の物質を含む膜102bとが積層された膜とすることが好ましく、第1の物質からなる膜102aと、第2の物質からなる膜102bとが積層された膜とすることがより好ましい。また、接着膜102は、第1の物質を含む膜102aと第2の物質を含む膜102bとがそれぞれ複数積層された多層膜であることがより好ましく、第1の物質からなる膜102aと第2の物質からなる膜102bとがそれぞれ複数積層された多層膜とするとさらに好ましい。また、接着膜102の厚みは、1nm以上1×103nm以下であることが好ましく、2nm以上1×102nm以下とすることがより好ましい。また、第1の物質からなる膜102aと第2の物質からなる膜102bとを積層させることで接着膜102の厚みを制御することができ、特に、3nm以上1×102nm以下の多層膜を形成させることがより好ましい。このような多層膜とすることで、より密に積層した構造体とすることができる。なお、本発明において、接着膜102の厚みは、位相差顕微鏡により10箇所測定した平均値により求めることができる。また、接着膜102の厚みは、別途、基材上に接着膜の形成を行い、水晶発振子マイクロバランスQCM測定法を用いて、行った処理ステップ数と形成される厚みとを測定し、その結果から細胞表面への接着膜形成時に行ったステップ数に応じて算出してもよい。第1、第2の物質は、それぞれ分子量1千以上1千万以下の高分子であることが好ましい。本明細書でいう高分子には、タンパク質などの天然高分子や化学的に得られる合成高分子も含むものである。第1の物質及び第2の物質の組合せとしては、インテグリンが結合するアルギニン-グリシン-アスパラギン酸RGD配列を含む高分子とRGD配列を含む高分子と相互作用する高分子との組み合わせであることが好ましい。また、正の電荷を有する高分子と、負の電荷を有する高分子との組合せも用いることができる。本発明において、RGD配列を含む高分子と相互作用するとは、例えば、静電的相互作用、疎水性相互作用、水素結合、電荷移動相互作用、共有結合形成、タンパク質間の特異的相互作用、ファンデルワールス力等により、化学的、物理的に、RGD配列を含む高分子と結合、接着、吸着、または電子の授受が可能な程度に近接することを意味する。なお、第1、第2の物質は、生分解性であることが好ましい。RGD配列を含む高分子とは、元来、RGD配列を有するタンパク質でもよいし、また、RGD配列が化学的に結合されたタンパク質であってもよい。また、RGD配列を有していればよく、タンパク質以外の天然由来高分子であってもよいし、合成高分子であってもよい。タンパク質からなるRGD配列を含む高分子としては、例えば、従来公知の接着性タンパク質が挙げられ、フィブロネクチン分子量約50万、ビトロネクチン、ラミニン、カドヘリン、コラーゲン等が使用できる。また、RGD配列を有する水溶性タンパク質も使用でき、例えば、RGDを結合させたコラーゲン、ゼラチン、アルブミン、グロブリン、プロテオグリカン、酵素、抗体等があげられる。その他のRGD配列を有する天然由来高分子としては、例えば、水溶性ポリペプチド、低分子ペプチド、α-ポリリジン、ε-ポリリジン等のポリアミノ酸、キチンやキトサン等の糖等においてRGD配列を有するものがあげられる。合成高分子としては、RGD配列を有していればよく、特に制限されない。合成高分子は、例えば、ポリマーでも共重合体でもよく、重合の形態も特に制限されず、例えば、直鎖型、グラフト型、くし型、樹状型、星型等があげられる。具体例として、例えば、ポリウレタン、ポリカーボネート、ポリアミド、及び、これらの共重合体、並びに、ポリエステル、ポリアクリル酸、ポリメタクリル酸、ポリエチレングリコール-グラフト-ポリアクリル酸、ポリ、ポリアミドアミンデンドリマー、ポリエチレンオキサイド、ポリε-カプロラクタム、ポリアクリルアミド、ポリ等があげられる。RGD配列を含む高分子の具体例を下記表1に示すがこれらには限定されない。また、RGD配列を含む高分子と相互作用する高分子としては、RGD配列を含む高分子との相互作用により、両物質が、例えば、結合、接着、吸着、電子の授受が可能な程度近接できる物質であれば特に制限されないが、RGD配列を含む高分子と相互作用するタンパク質、天然由来高分子及び合成高分子のいずれかを使用できる。RGD配列を含む高分子と相互作用するタンパク質としては、特に制限されないが、例えば、水溶性タンパク質があげられ、具体例として、コラーゲン、ゼラチン一例として分子量10万、プロテオグリカン、インテグリン、酵素、抗体等が使用できる。RGD配列を含む高分子と相互作用する天然由来高分子としては、特に制限されないが、例えば、水溶性ポリペプチド、低分子ペプチド、α-ポリリジン,ε-ポリリジン分子量5千等のポリアミノ酸、ヘパリンやヘパラン硫酸、デキストラン硫酸分子量50万、ヒアルロン酸分子量100万~等の糖等があげられる。合成高分子としては、特に制限されず、例えば、ポリマーでも共重合体でもよく、重合の形態も、例えば、直鎖型、グラフト型、くし型、樹状型、星型等があげられる。具体例として、例えば、ポリウレタン、ポリアミド、ポリカーボネート、及び、これらの共重合体、並びに、ポリエステル、ポリアクリル酸、ポリメタクリル酸、ポリエチレングリコール-グラフト-ポリアクリル酸、ポリ、ポリアミドアミンデンドリマー、ポリエチレンオキサイド、ポリε-カプロラクタム、ポリアクリルアミド、ポリ等があげられる。RGD配列を含む高分子と相互作用する高分子の具体例を下記表2に示すがこれらには限定されない。このような第1の物質と第2の物質との組合せとしては、特に制限されず相互作用する異なる物質の組合せであればよく、いずれか一方がRGD配列を含む高分子であり、他方が、RGD配列を含む高分子と相互作用する高分子であればよい。具体的には、フィブロネクチンとゼラチン、フィブロネクチンとε-ポリリジン、フィブロネクチンとヒアルロン酸、ラミニンとゼラチン、ビトロネクチンとゼラチン、フィブロネクチンとデキストラン硫酸、フィブロネクチンとへパリン、エラスチンとポリリジン、フィブロネクチンとコラーゲン、ラミニンとコラーゲン、ビトロネクチンとコラーゲン、RGD結合コラーゲンまたはRGD結合ゼラチンとコラーゲンまたはゼラチン等の組合せがあげられ、中でもフィブロネクチンとゼラチン、フィブロネクチンとヘパリン、フィブロネクチンとε-ポリリジン、フィブロネクチンとヒアルロン酸、フィブロネクチンとデキストラン硫酸との組合せが好ましく、より好ましくはフィブロネクチンとゼラチンとの組合せである。なお、第1の物質と第2の物質は、それぞれ一種類ずつでもよいし、相互作用を示す範囲で二種類以上をそれぞれ併用してもよい。正の電荷を有する高分子としては、正の電荷を有していれば、例えば、天然由来高分子でも合成高分子でもよい。正イオンに対応するカウンターの負イオンは、特に制限されないが、塩化物イオンが好ましい。天然由来高分子としては、例えば、水溶性タンパク質が好ましく、具体的には、塩基性コラーゲン、塩基性ゼラチン、リゾチーム、シトクロムc、ペルオキシダーゼ、ミオグロビン等があげられる。また、その他の天然由来高分子としては、例えば、水溶性ポリペプチド、低分子ペプチド、α-ポリリジン塩、ε-ポリリジン塩一例として、分子量5千、ポリアルギニン塩、ポリヒスチジン塩等のポリアミノ酸、キチン、キトサン等の糖等があげられる。また、合成高分子としては、特に制限されず、例えば、ポリマーでも共重合体でもよく、重合の形態も、例えば、直鎖型、グラフト型、くし型、樹状型、星型等があげられる。具体例として、例えば、ポリウレタン、ポリアミド、ポリカーボネート及びその共重合体等、並びに、ポリエステル、ポリジアリルジメチルアンモニウム塩一例として、分子量7万、ポリアリルアミン塩、ポリエチレンイミン、ポリビニルアミン、ポリアミドアミンデンドリマー等があげられる。また、負の電荷を有する高分子としては、負の電荷を有していれば、例えば、天然由来高分子でも合成高分子でもよい。負イオンに対応するカウンターの正イオンは、特に制限されないが、ナトリウムイオンが好ましい。天然由来高分子としては、特に制限されないが、例えば、負の電荷を有するタンパク質が好ましく、具体的には、酸性コラーゲン、酸性ゼラチン、アルブミン、グロブリン、カタラーゼ、β-ラクトグロブリン、チログロブリン、α-ラクトアルブミン、卵白アルブミン等があげられる。また、その他の天然由来高分子としては、水溶性ポリペプチド、低分子ペプチド、α-ポリリジン、ε-ポリリジン等のポリアミノ酸、糖等があげられる。合成高分子としては、特に制限されず、例えば、ポリマーでも共重合体でもよく、重合の形態も、例えば、直鎖型、グラフト型、くし型、樹状型、星型等があげられる。具体例として、例えば、ポリウレタン、ポリアミド、ポリカーボネートおよびその共重合体、並びに、ポリエステル、ポリアクリル酸一例として、分子量25万、ポリメタクリル酸、ポリスチレンスルホン酸塩一例として、分子量20万、ポリアクリルアミドメチルプロパンスルホン酸、末端カルボキシ化ポリエチレングリコール等があげられる。このような第1の物質と第2の物質との組合せとしては、特に制限されず相互作用する異なる物質の組合せであればよく、いずれか一方が正の電荷を有する物質であり、他方が、負の電荷を有する物質であればよい。具体的には、例えば、ε-ポリリジン塩とポリスチレンスルホン酸塩との組合せ、ポリジアリルジメチルアンモニウム塩とポリアクリル酸塩との組合せ、キトサンとデキストラン硫酸との組合せ、ポリアリルアミンハイドロクロライドとポリスチレンスルホン酸塩との組合せ、ε-ポリリジンとポリスチレンスルホン酸塩との組合せ、ポリジアリルジメチルアンモニウムクロライドとポリスチレンスルホン酸塩との組合せ等があげられ、好ましくはε-ポリリジン塩とポリスチレンスルホン酸塩との組合せ、ポリジアリルジメチルアンモニウム塩とポリアクリル酸塩との組合せである。なお、第1の物質と第2の物質とは、それぞれ一種類ずつでもよいし、相互作用を示す範囲で二種類以上をそれぞれ併用してもよい。培養細胞101の種類は、組織を形成する多細胞生物の細胞であればどのような細胞でも用いることができる。動物細胞であってもよいし、植物細胞であってもよいが、動物細胞が好ましく、哺乳類由来の細胞がより好ましい。哺乳類由来の細胞として、肝細胞、血管内皮細胞、線維芽細胞、表皮細胞、上皮細胞、乳腺細胞、筋細胞、神経細胞、組織幹細胞、胚性幹細胞、骨細胞および免疫細胞等の接着性細胞があげられる。細胞は、一種類でもよいし、二種類以上を用いて共培養を行ってもよい。互いに接着している被覆細胞103と培養細胞101とが同一種類の細胞であってもよいし、異なる種類の細胞であってもよく、垂直方向に積層され接着している培養細胞101と被覆細胞103とが異なる細胞であってもよいし、平面視方向で接着している培養細胞101と被覆細胞103とが同一種類の細胞であってもよいし、異なる細胞であってもよい。本実施の形態の三次元構造体は、基材上に作製されたものであってもよい。基材の種類は何ら制限されず、例えば、その形状、形態、材質等についても特に制限されず、従来公知のものが使用できる。基材の形状は平板なものが好ましく、これによりシート状の三次元構造体を作製することができる。基材の材質としては、特に制限されないが、例えば、ガラス、各種ポリマーからなるプラスチック、ろ紙、金属、ハイドロゲル等があげられる。その形態も、特に制限されず、例えば、非孔質基材、多孔質基材、ファイバー、織布や不織布等の布や、例えば、ハイドロゲル表面、医療用材料表面、人工臓器表面、細胞膜のようなリン脂質膜等の上にも形成できる。つづいて、本実施の形態に係る細胞の三次元構造体を製造する方法の一例について図2を用いつつ説明する。まず、培養細胞101を用意し図2a、その表面全体を接着膜102で被覆して被覆細胞103を作製する図2b。被覆細胞103の作製工程を図3を用いてより具体的に説明する。図3で示すように、用意した培養細胞101を試験管に入れる図3a。ここで用いる試験管としては、細胞の付着をできるだけ抑制しうるものであれば、どのようなものであってもよく、ガラス製であってもよいし、プラスチック製のものを用いてもよい。ついで、第1の物質を培養細胞101に接触させる図3b。培養細胞101と第1の物質との接触方法としては、特に制限されず、例えば、第1の物質を直接添加する方法、第1の物質の含有液に基材を浸漬する方法、培養細胞101に第1の物質の含有液を滴下または噴霧する方法等があげられるが、操作が容易であることから浸漬が好ましい。接触の条件は、特に制限されず、接触方法や使用する含有液の濃度等によって適宜決定できる。具体的には、接触時間は、特に制限されないが、例えば、1~1440分であり、好ましくは5~60分、より好ましくは10~15分であり、接触温度は、特に制限されないが、例えば、4~60°Cであり、好ましくは20~40°C、より好ましくは30~37°Cである。第1の物質の含有液を調製する場合、溶媒としては、特に制限されないが、水や緩衝液等の水性溶媒があげられ、緩衝液としては、例えば、Tris-HCl緩衝液等のTris緩衝液、リン酸緩衝液、HEPES緩衝液、クエン酸-リン酸緩衝液、グリシルグリシン-水酸化ナトリウム緩衝液、Britton-Robinson緩衝液、GTA緩衝液等が使用できる。溶媒のpHも、特に制限されないが、例えば、3~11であり、好ましくは6~8であり、より好ましくは7.2~7.4である。第1の物質の濃度は、特に制限されないが、例えば、0.0001~1質量であり、好ましくは0.01~0.5質量であり、より好ましくは0.02~0.1質量である。第1の物質は、このように溶媒に溶解もしくは分散させることによって、第1の物質の含有液を調製することができる。また、第1の物質の含有液は、さらに、塩化ナトリウム、塩化カルシウム、炭酸水素ナトリウム、酢酸ナトリウム、クエン酸ナトリウム、塩化カリウム、リン酸水素ナトリウム、硫酸マグネシウム、コハク酸ナトリウム等の塩を含有してもよい。いずれか一方の含有液のみでもよいし、両含有液が前記塩を含有してもよい。前記含有液における塩濃度は、特に制限されないが、例えば、1×106~2Mであり、好ましくは1×104~1Mであり、より好ましくは1×104~0.05Mである。塩は、一種類でもよいし二種類以上を併用してもよい。第1の物質の含有液は、さらに、細胞成長因子、サイトカイン、ケモカイン、ホルモン、生理活性ペプチド等を含んでもよい。このように成長因子等を含有することによって、細胞層の形成の際に、例えば、細胞の増殖速度や増殖程度を調節することも可能となる。また、第1の物質の含有液は、さらに、疾患の治療剤、予防剤、抑制剤、抗菌剤、抗炎症剤等の医薬組成物を含有してもよい。このような含有液を用いて製造した三次元組織は、前述のような医薬組成物を含むことから、例えば、ヒトやヒトを除く哺乳類、その他の動物の体内等に移植することによって、疾患の治療や予防を行うこともできる。このようにして培養細胞101を第1の物質からなる膜102aにより被覆した後、遊離している第1の物質を除去する。第1の物質を除去する方法としては、特に制限されないが、上記の溶媒を用いて遠心分離を行い、培養細胞101と第1の物質の含有液とを分離して上澄みを取り除くことで、遊離している第1の物質を除去する方法が挙げられる図3c。こうすることで、第1の物質からなる膜102aで被覆された被覆細胞を得ることができる。接着膜102として、第1の物質からなる膜102aと第1の物質とは異なる第2の物質からなる膜102bとからなる積層膜を形成させる場合、第1の物質で被覆された培養細胞101を第2の物質と接触させることにより、第2の物質からなる膜102bで被覆する図3d。第2の物質との接触方法は、第1の物質と同様な方法で行うことができ、第2の物質の含有液を用いて接触させる場合は、第1の物質の含有液を調製する方法と同様にして第2の物質の含有液を調製することができる。こうすることで、第1の物質からなる膜102aと、第2の物質からなる膜102bとからなる接着膜102で被覆された培養細胞101が被覆細胞103として得られる。なお、第1の物質及び第2の物質として用いる材料としては前述したものを用いることができるが、RGD配列を含む高分子と、RGD配列を含む高分子と相互作用する高分子とを組み合わせて用いる場合は、第1の物質としてRGD配列を含む高分子を用い、第2の物質としてRGD配列を含む高分子と相互作用する高分子を用いることが好ましい。具体的には、最初にRGD配列を含む高分子からなる膜102aを形成した後、RGD配列を含む高分子と相互作用する高分子からなる膜102bを形成させることが好ましい。また、正の電荷を有する高分子と、負の電荷を有する高分子とを組み合わせて用いる場合は、第1の物質として正の電荷を有する高分子を用い、第2の物質として負の電荷を有する高分子を用いることが好ましい。具体的には、最初に正の電荷を有する高分子からなる膜102aを形成した後、負の電荷を有する高分子からなる膜102bを形成させることが好ましい。例えば、第1の物質からなる膜102aとしてフィブロネクチンからなる膜を形成した後、第2の物質からなる膜102bとしてゼラチン、ε-ポリリジン、ヒアルロン酸及びデキストラン硫酸の少なくとも一種からなる膜を形成する方法や、第1の物質からなる膜102aとしてε-ポリリジン塩特にε-ポリリジンの塩酸塩からなる膜を形成した後、第2の物質からなる膜102bとしてポリスチレンスルホン酸塩特にナトリウム塩を形成する方法、第1の物質からなる膜102aとしてポリジアリルジメチルアンモニウム塩特にクロライド塩を形成した後、第2の物質からなる膜102bとしてポリアクリル酸塩特にナトリウム塩を形成する方法が挙げられる。培養細胞101の表面の全面を接着膜102で覆うことができれば、本発明の効果を得ることはできる。そのため、第1の物質からなる膜102aと第2の物質からなる膜102bとはそれぞれ1層ずつ形成させて、培養細胞101の表面の全面を接着膜102で覆うことができればよいが、第2の物質で被覆された培養細胞に第1の物質をさらに接触させて第1の物質からなる膜102aで被覆し図3b、第1の物質からなる膜102aと第2の物質からなる膜102bとを交互に積層させる図3b~dことで、確実に培養細胞101の表面の全面を接着膜102で覆うことができる。また、接着膜102は一層でも本発明の効果を得ることができるが、薄膜を積層させることでより密な細胞構造体を得ることができる。そこで、第2の物質で被覆された培養細胞にさらに第1の物質を接触させ、図3bで示す第1の物質との接触工程と、図3dで示す第2の物質との接触工程とを繰り返す。こうすることで、第1の物質からなる膜102aと第2の物質からなる膜102bとを交互に積層させ、所望の厚みからなる接着膜102を形成させることができる。図3bで示す第1の物質との接触工程と、図3dで示す第2の物質との接触工程は、5段階以上繰り返すと好ましく、9段階以上繰り返すとより好ましい。こうすることで、3nm以上1×102nm以下の厚みの接着膜102を形成させることができる。図2に戻り、得られた被覆細胞103を基材に播種する図2c。基材の種類は何ら制限されず、例えば、その形状、形態、材質等についても特に制限されず、従来公知のものが使用できる。基材の材質としては、特に制限されないが、例えば、ガラス、各種ポリマー、ろ紙、金属、ハイドロゲル等があげられる。その形態も、特に制限されず、例えば、非孔質基材、多孔質基材、ファイバー、織布や不織布等の布等があげられる。また、例えば、ハイドロゲル表面、医療用材料表面、人工臓器表面、細胞膜のようなリン脂質膜等の上にも形成できる。基材には、細胞の培養に必要な培地を形成し、培地上に被覆細胞103を播種させてもよい。培地は特に制限されず、細胞に応じて適宜使用でき、例えば、EaglesMEM培地、DulbeccosModifiedEagle培地、ModifiedEagle培地、MinimumEssential培地、RDMI、GlutaMax培地、無血清培地等が使用できる。播種する細胞数は、特に制限されないが、例えば、0.01×104~100×104cells/cm2であり、好ましくは1×104~10×104cells/cm2である。その後、培養細胞101表面全体が接着層102で被覆された被覆細胞103を培養する図2d。細胞の培養条件は、特に制限されず、培養する細胞に応じて適宜決定できる。一般的な条件としては、培養温度が、例えば、4~60°Cであり、好ましくは20~40°C、より好ましくは30~37°Cであり、培養時間は、例えば、1~168時間であり、好ましくは3~24時間、より好ましくは3~12時間である。これにより、接着膜102を介して、被覆細胞103同士を接着させたり、被覆細胞103から増殖した培養細胞101と被覆細胞103とを互いに接着させたりして、細胞の三次元構造体を製造することができる。三次元構造体の厚みは、培養時間により制御させることができるが、例えば、24時間培養させることで、シート状の三次元構造体を7層以上形成させることができ、厚みは、10μm以上100μm以下にすることができる。接着膜102を形成させる成分例えば、第1の物質及び第2の物質と、上記説明した三次元構造体の製造方法を記載した使用説明書とを備えることで、本発明の三次元構造体を製造するためのキットとすることができる。こうしたキットには、さらに基材を備えてもよく、板状の基材を備えることで、シート状の細胞の三次元構造体を製造するためのキットとすることができる。また、こうして得られた細胞の三次元構造体の上にさらに培養細胞からなる細胞層を積層させてもよい。このとき用いられる培養細胞としては、被覆細胞103を構成する培養細胞101と同種であっても異種であってもよいし、接着膜102で被覆された被覆細胞103であってもよいし、接着膜102で被覆されていない培養細胞101であってもよい。得られる三次元構造体を用いて薬物の細胞応答を評価することができる。こうした薬物の細胞応答評価は特に限定されず、例えば、皮膚細胞を培養させて化粧品のアレルギー反応の評価に用いることもできる。また、本発明の細胞の三次元構造体の上にヒトやヒト以外のほ乳類から分離した肝細胞、血管内皮細胞、線維芽細胞、表皮細胞、上皮細胞、乳腺細胞、筋細胞、神経細胞、組織幹細胞、胚性幹細胞、骨細胞、歯髄細胞および免疫細胞等の接着性細胞を培養させてもよい。こうすることで、異常な組織を除去して健常な組織のみを再生し、ヒトやヒト以外のほ乳類の体内に戻すことで治療に役立てることができる。また、血液、皮膚、歯、骨などの再生にも役立てることができる。なお、これら細胞の培養条件は、前述と同様である。第2の実施形態図10は、本実施の形態に係る三次元構造体の一例を示す模式的な断面図である。本実施の形態では、第1の実施形態と異なる点を説明し、第1の実施形態と同様な説明は適宜省略する。本実施の形態での三次元構造体には、第1の実施形態において説明した培養細胞101として、第一培養細胞101a及び第一培養細胞101aとは異なる第二培養細胞101bが用いられる。また、第1の実施形態において被覆細胞103として、第一培養細胞101aが接着膜102で被覆された第一被覆細胞103a、及び、第二培養細胞101bが接着膜102で被覆された第二被覆細胞103bが用いられる。そして、第一培養細胞101aと第一被覆細胞103aとが接着膜102を介して互いに接着して第一の積層構造10を形成し、第二培養細胞101bと第二被覆細胞103bとが接着膜102を介して互いに接着している第二の積層構造20を形成し、第一の積層構造10上に第二の積層構造20が積層されることで三次元構造体が構築されている。第一培養細胞101a及び第二培養細胞101bは、互いに異なる細胞であればよく、第1の実施の形態で培養細胞101として例示された任意の細胞を組み合わせて用いることができる。接着膜102は、第1の実施形態で説明した接着膜102と同様にすることができる。具体的には、本実施の形態の接着膜102もまた、第1の実施の形態と同様に、第1の物質を含む膜102aと第2の物質を含む膜102bとが積層された構成を採用することができる。第一被覆細胞103aと第二の被覆細胞103bとは、接着膜102の構成が同じであってもよいし、異なっていてもよいが、同じであることが好ましい。第一の積層構造10と第二の積層構造20との間には、ナノ細胞外マトリックスナノECM30が形成されており、第一の積層構造10と第二の積層構造20とを接着している。ナノECM30は、接着膜102と同成分から構築されており、好ましくは、第1の実施形態で説明した、第1の物質と第2の物質とが交互に積層されることで形成されている。第1の物質及び第2の物質の種類は、第1培養細胞101aや第2培養細胞101bを覆う接着膜102の構成成分と同じであってもよいし異なってもよいが、同じにするのが好ましい。ナノECM30の厚みは、特に制限されないが、1nm以上が好ましく、1~1000nmがより好ましく、1~100nmがさらに好ましい。つづいて、図11を用いて本実施の形態の三次元構造体の製造方法について説明する。まず、第1の実施形態で説明した方法と同様に、第一培養細胞101aに、第1の物質からなる膜102aと第2の物質からなる膜102bとを積層させて、第一培養細胞101aが接着膜102で被覆された第一被覆細胞103aを形成する図11a。また、同様に、第二培養細胞101bに、第1の物質からなる膜102aと第2の物質からなる膜102bとを積層させて、第二培養細胞101bが接着膜102で被覆された第二被覆細胞103bを形成する。ついで、第一被覆細胞103aを基材に播種する。基材及び播種する細胞の数は、第1の実施形態と同様にすればよい。その後、第1の実施形態と同様に第一被覆細胞103aを培養し、第一の積層構造10を形成する第一の培養工程、図11b。ここで、第一の積層構造10の厚みは、10μm以上100μm以下にすることが好ましい。こうすることで、第一被覆細胞103aを良好に培養させることができる。これにより、数時間の培養で、1~10層のシート状の第一の積層構造10を、一度に作成することができる。ついで、接着膜102の構成材料を第1の積層構造10の表面に接触させて、ナノ細胞外マトリックスナノECM30を形成する図11c。ナノECM30を形成する方法としては、例えば、第1の実施形態で説明した第1の物質と第2の物質とを交互に積層させる方法がある。具体的には、第1の物質と第2の物質をそれぞれ含む溶液に交互に浸積する方法が挙げられる。ナノECM30は、例えば、特許文献1記載の技術を用いて形成してもよい。その後、あらかじめ、第1の実施形態で説明した方法と同様に作製された第二被覆細胞103bをナノECM30上に播種する。このとき播種する細胞の密度も第1の実施の形態と同様にすることができる。ついで、第一被覆細胞103aと同様に第二被覆細胞103bを培養し、第一の積層構造10上に第二の積層構造20を形成する第二の培養工程、図11d。第二の積層構造20の厚みもまた、10μm以上100μm以下にすることが好ましい。これにより、数時間の培養で、1~10層のシート状の第二の積層構造20を、一度に作成することができる。この後、さらに第二の積層構造20にナノECM30を形成した後に第一の被覆細胞10を播種し、第一の培養工程を繰り返してもよい。こうすることで、第二の積層構造20上に、第一の積層構造10を形成させることができる図12。図12の三次元構造体においては、例えば、第一培養細胞101aとして繊維芽細胞を用い、第二培養細胞101bとして血管内皮細胞を用いることができる。このとき、図12で示す三次元構造体を、好ましくは35~39°C、より好ましくは37°Cの温度条件下で、0.5日~7日間培養してもよい。これにより、第二の積層構造20には、血管内皮細胞から血管枝が成長し、これを分岐して組織化させることができる。したがって、第二の積層構造20に血管網を形成させることも可能である。このように本実施の形態においても、三次元配置のバリエーションが豊富な細胞組織を短時間で作製することができる。第3の実施形態図13は、本実施の形態に係る三次元構造体の一例を示す模式的な断面図である。本実施の形態では、第1の実施形態と異なる点を説明し、第1の実施形態と同様な説明は適宜省略する。本実施の形態の三次元構造体には、第1の実施形態において説明した培養細胞101として、第一培養細胞101a及び第一培養細胞101aとは異なる第二培養細胞101bが用いられる。また、第1の実施形態において被覆細胞103として、第一培養細胞101aが接着膜102で被覆された第一被覆細胞103a、及び、第二培養細胞101bが接着膜102で被覆された第二被覆細胞103bが用いられる。そして、第一被覆細胞103aと第二培養細胞101bとが接着膜102を介して互いに接着し、第二被覆細胞103bと第一培養細胞101aとが接着膜102を介して互いに接着することで、三次元構造体が構築されている。第一培養細胞101a及び第二培養細胞101bは、互いに異なる細胞であればよく、第1の実施の形態で培養細胞101として例示された任意の細胞を組み合わせて用いることができる。接着膜102は、第1の実施形態で説明した接着膜102と同様にすることができる。具体的には、本実施の形態の接着膜102もまた、第1の実施の形態と同様に、第1の物質を含む膜102aと第2の物質を含む膜102bとが積層された構成を採用する。第一被覆細胞103aと第二の被覆細胞103bとは、接着膜102の構成が同じであってもよいし、異なっていてもよいが、同じであることがより好ましい。つづいて、本実施の形態の三次元構造体の製造方法について説明する。まず、第1の実施形態で説明した方法と同様に、第一培養細胞101に、第1の物質からなる膜102aと第2の物質からなる膜102bとを積層させて、第一培養細胞101aが接着膜102で被覆された第一被覆細胞103aを形成する。また、第1の物質からなる膜102aと第2の物質からなる膜102bとを積層させて、第二培養細胞101bが接着膜102で被覆された第二被覆細胞103bを形成する。ついで、第一被覆細胞103a及び第二被覆細胞103bを混合して基材に播種する。基材及び播種する細胞の数も第1の実施の形態と同様にすればよい。ついで、第1の実施形態と同様に第一被覆細胞103a及び第二被覆細胞103bを培養し、図13で示す三次元構造体を形成する。ここで、図13で示す三次元構造体の厚みは、10μm以上100μm以下にすることが好ましい。こうすることで、第一被覆細胞103a及び第二被覆細胞103bを良好に培養させることができる。これにより、数時間の培養で、1~10層のシート状の細胞構造体を、一度に作成することができる。図13の三次元構造体において、例えば、第一培養細胞101aとして繊維芽細胞を用い、第二培養細胞101bとして血管内皮細胞を用いることができる。このとき、図13で示す三次元構造体を、好ましくは35~39°C、より好ましくは37°Cの温度条件下で、0.5日~7日間培養してもよい。これにより、第2の実施形態に比して効率は劣る一方、接着膜102を介して繊維芽細胞が接着した血管内皮細胞から血管枝が成長し、これが分岐して組織化し、血管網を形成させることが可能である。このように本実施の形態においても、三次元配置のバリエーションが豊富な細胞組織を短時間で作製することができる。以上、図面を参照して本発明の実施形態について述べたが、これらは本発明の例示であり、上記以外の様々な構成を採用することもできる。実施例1第1の物質としてフィブロネクチンを用い、第2の物質としてゼラチンを用い、フィブロネクチンとゼラチンとからなる接着膜102で細胞表面全面を被覆したヒト繊維芽細胞Cambrex社製、正常ヒト皮膚繊維芽細胞NHDFを用いて図1に示す細胞の三次元構造体を作製した。作製方法は、図2、3に示す方法に従った。具体的には、1ウェルあたりヒト繊維芽細胞4×106個をそれぞれ用意し、0.2mg/mLのフィブロネクチンウシ由来シグマアルドリッチ社製、F-4759の50mMトリス緩衝液pH7.41mLを加えて37°Cで1分間インキュベーションした。その後、2000rpmで2分間遠心分離を行い、上澄みを除去した。続いて、0.2mg/mLのゼラチン和光純薬工業社製、077-03155の50mMトリス緩衝液pH7.41mLを加えて37°Cで1分間インキュベートした。その後、2000rpmで2分間遠心分離を行い、上澄みを除去した。これを1ステップとして、9ステップ実行し、フィブロネクチンからなる膜とゼラチンからなる膜とを交互に積層して、膜厚6nmの接着膜をヒト繊維芽細胞に形成した。なお、膜厚は、位相差顕微鏡により10箇所測定し、得られた測定値を平均化することで求めた。その後、接着膜で被覆されたヒト繊維芽細胞2×106個をセルカルチャーインサートベクトンディッキンソン社製、353090のメンブレンフィルターに播種し、さらに、10重量ウシ胎仔血清FABを含むEaglesMEM培地を添加してから37°Cで48時間インキュベートして培養した。これにより厚み40μmのシート状のヒト繊維芽細胞の三次元構造体が得られた。得られた実施例1の三次元組織をHE染色した後、位相差顕微鏡より評価した。図4に結果を示す。図4で図示するように、細胞の重なりが観察された。なお、24時間インキュベート後には、7層のヒト繊維芽細胞の三次元構造体が観察された。比較例1実施例1において、接着膜を形成していないヒト繊維芽細胞にセルカルチャーインサートに播種し、同様に培養した。得られた実施例1の三次元組織をHE染色した後、位相差顕微鏡より評価した。図5に結果を示す。空隙が観察されており、細胞が接着できず組織化できないことが示された。実施例2実施例1において、フィブロネクチンとゼラチンとの接触を1ステップのみ行い、膜厚2nmの接着膜を形成した。その他は、実施例1と同様にし、厚み52μmのシート状のヒト繊維芽細胞の三次元構造体を得た。実施例3実施例1において、フィブロネクチンとゼラチンとの接触を5ステップ行い、膜厚4nmの接着膜を形成した。その他は、実施例1と同様にし、厚み45μmのシート状のヒト繊維芽細胞の三次元構造体を得た。比較例2特開2007-228921号公報の実施例4において、ヒト臍帯動脈平滑筋細胞UASMCにかえてヒト繊維芽細胞を用い、ゼラチンとフィブロネクチンとからなるナノECM細胞外マトリックスと細胞層とを順に積層させる構造を作製した。1層の細胞層を形成させるために、37°Cで6時間インキュベーションさせる必要があるため、7層の細胞層を作製するのに42時間要し、実施例1の2倍の時間がかかった。実験例1培養細胞に接着膜が形成されていることの確認実験を図3に従った方法で行った。具体的には、まず、フィブロネクチンシグマアルドリッチ社製、F-4759をファロイジン-ローダミンRhを用いて標識した。また、ゼラチン和光純薬工業社製、077-03155は、fluoresceinisothiocyanateFITCを用いて標識した。そして、5×106個のL929マウス繊維芽細胞DSファーマバイオメディカル、EC85011425に0.2mg/mLのRhラベル化フィブロネクチンの50mMトリス緩衝液pH7.41mLを加えて37°Cで1分間インキュベーションした。その後、2000rpmで2分間遠心分離を行い、上澄みを除去した。続いて、0.2mg/mLのFITCラベル化ゼラチンの50mMトリス緩衝液pH7.41mLを加えて37°Cで1分間インキュベートした。その後、2000rpmで2分間遠心分離を行い、上澄みを除去した。これを1ステップとして、9ステップ実行し、フィブロネクチンからなる膜とゼラチンからなる膜とを交互に積層して、膜厚6nmの接着膜をマウス繊維芽細胞に形成した。膜厚は、水晶発振子マイクロバランスQCMにより求めたが、位相差顕微鏡の観察による測定結果と同様の結果が得られた。QCM測定法を用いた測定は、具体的には以下のように行った。QCM水晶センサをピランハ溶液過酸化水素水:濃硫酸1:3、v/v混合液で1分間洗浄してから、0.2mg/mLフィブロネクチンの50mMトリス緩衝液pH7.4に37°Cで1分間浸漬し、50mMトリス緩衝液pH7.4で洗浄して風乾した後、振動数シフトを測定したステップ1。ついで0.2mg/mLゼラチンの50mMトリス緩衝液pH7.4に37°Cで1分間浸漬し、50mMトリス緩衝液pH7.4で洗浄して風乾した後、振動数シフトを測定したステップ2。このステップ1及び2を交互に繰り返すことによりQCM水晶センサに接着膜を形成すると共に、振動数シフトの測定を行った。得られた振動数シフトに基づき、ステップの数とそれにより形成される接着膜の厚みとを得た。特許文献1の図2に示すように、ステップを繰り返すことによって、振動数シフトが減少し、QCM基材上にナノレベルの層が連続的に形成されることがわかる。また、振動数の減少が、ステップ数と相関関係を示していることから、ステップ数の増加によって形成するナノECMの膜厚を増加させ、ステップ数の減少によって形成するナノECMの膜厚を低減できる。実験例1のL929マウス繊維芽細胞の位相差顕微鏡の画像を図6に示す。図6aが接着膜を形成する前の画像であり、図6bが1ステップ目のフィブロネクチンからなる膜を形成した直後の画像であり、図6cが2ステップ目のゼラチンからなる膜を形成した直後の画像であり、図6dが5ステップ目のフィブロネクチンからなる膜を形成した直後の画像であり、図6eが9ステップ目のフィブロネクチンからなる膜を形成した直後の画像であり、図6fが図6dで示す画像と5ステップ目のゼラチンからなる膜を形成した直後の画像との重ね合わせ画像である。各ステップにおいて、個々の細胞表面の全面がフィブロネクチンからなる膜、及び、ゼラチンからなら膜で覆われていることがわかる。実験例2~7接着膜の形成と細胞毒性との関係を評価した。接着膜の形成は、5×106個のL929マウス繊維芽細胞理化学研究所、CellBankを用いて、図3に従った方法で行った。第1の物質として、フィブロネクチンシグマアルドリッチ社製、F-4759、ε-ポリリシン塩酸塩チッソ社製、分子量4700、ポリアリルアミン塩酸塩日東紡社製、PAA-HCLに50mMトリス緩衝液pH7.4を加え、0.2mg/mLの第1の物質の含有液をそれぞれ調製した。また、第2の物質として、ゼラチン和光純薬工業社製、077-03155、ヘパリン和光純薬081-00136100,000ユニット、デキストラン硫酸和光純薬工業社製、199-09983、分子量500,000、ポリスチレンスルホン酸ナトリウム塩、ポリアクリル酸ナトリウム塩に50mMトリス緩衝液pH7.4を加え、0.2mg/mLの第2の物質の含有液をそれぞれ調製した。L929マウス繊維芽細胞を第1の物質の含有液1mLに1分間浸積した後、2000rpmで2分間遠心分離を行った。上澄みを取り除いて第1の物質を除去した。その後、第2の物質の含有液1mLを添加して1分間浸積し、同様に遠心分離を行って、上澄みを取り除くことで第2の物質を除去した。これを1ステップとして、10ステップ繰り返した。遠心分離直後、上澄みを除去前に、CellTrackerGreenCMFDA、インビトロジェン社製及びHE染色して細胞の挙動を確認したところ、第1の物質としてフィブロネクチンを用い第2の物質としてゼラチン又はε-ポリリシン塩酸塩を用いた場合実験例2、5は、細胞の凝集が見られなかったが、第1の物質としてフィブロネクチンを用い第2の物質としてヘパリンを用いた場合実験例4は、細胞の凝集が認められた。ただし、実験例4においても、50mMトリス緩衝液pH7.4を1mL加えることで細胞は分散した。10ステップ処理後の被覆細胞の膜厚を位相差顕微鏡により観察したところ、表3で示す結果が得られた。また、各ステップの処理後の細胞の構造体の生存数を確認し、接着膜を形成する前の5×106個を100として、生存率を求めた。ステップ数と生存率との関係を図7に示す。実験例8実験例2で作製したL929マウス繊維芽細胞の被覆細胞と、接着膜で被覆されていないL929マウス繊維芽細胞を、10重量ウシ胎仔血清FABを含むEaglesMEM培地が添加されたシャーレに1.8×103個/cm2播種し、37°Cでインキュベートして培養した。24時間後及び96時間後の位相差顕微鏡の画像を図8に示す。図8abが、接着膜が形成されていないL929マウス繊維芽細胞を培養させた結果であり、図8cdが実施例2のL929マウス繊維芽細胞を培養させた結果である。図8acが培養24時間後の結果であり、図8bdが培養96時間後の結果である。また、培養後24、48、72、96時間における細胞数を位相差顕微鏡で観察することで計測した。図9が培養時間と細胞数との関係を示す図である。倍加時間はL929マウス繊維芽細胞で23時間であり、実験例2の被覆細胞で25時間だった。なお、実験例2~7で得られた被覆細胞を実施例1と同様に培養することで、L929マウス繊維芽細胞の三次元構造体が得られる。実施例4図10で示す三次元構造体を作製した。図11は、異種細胞の積層組織を構築する方法を説明する模式的な図である。異種細胞のモデルとして、ヒト繊維芽細胞Cambrex社製、正常ヒト皮膚繊維芽細胞NHDFを赤色色素タカラバイオ、CellTrackerOrangeFluorescentProbe、PA-3012と緑色色素タカラバイオ、CellTrackerGreenFluorescentProbe、PA-3011に着色したものをそれぞれ用意し、第1の物質としてフィブロネクチン、第2の物質としてゼラチンを用いて、実施例1と同様な手技により、フィブロネクチンとゼラチンとからなる接着膜102膜厚6nmを成膜した。これにより、緑色色素に着色したヒト繊維芽細胞が、フィブロネクチンとゼラチンとからなる接着膜102で被覆された第一被覆細胞103aと、赤色色素に着色したヒト繊維芽細胞がフィブロネクチンとゼラチンとからなる接着膜102で被覆された第二被覆細胞103bとが得られた。その後、第一被覆細胞103aを1.1×106個/cm2セルカルチャーインサートベクトンディッキンソン社製、353090のメンブレンフィルターに播種し、さらに、10重量ウシ胎仔血清FABを含むEaglesMEM培地を添加した後、37°Cで24時間インキュベートして培養し、4層の第一の積層構造10を構築した。ついで、実施例1で用いたフィブロネクチン含有緩衝液とゼラチン含有緩衝液への浸積を交互に合計9ステップ行い、フィブロネクチンとゼラチンとが交互に積層されたナノECM30を作成した。その後、第二被覆細胞103bを1.1×106個/cm2播種し、さらに、10重量ウシ胎仔血清FABを含むEaglesMEM培地を添加した後、37°Cで24時間インキュベートして培養し、4層の第二の積層構造20を構築した。得られた三次元構造体を共焦点レーザー顕微鏡ConfocalLaserScanningMicroscope:CLSMで観察したところ、図14で示す結果が得られ、4層からなる第一被覆細胞103aの積層組織の上に4層からなる第二被覆細胞103bの積層組織が構築できたことを確認した。実施例5図13で示す三次元構造体を作製した。実施例4で得られた第一被覆細胞103aを1.1×106個/cm2、及び、第二被覆細胞103bを1.1×106個/cm2セルカルチャーインサートベクトンディッキンソン社製、353090のメンブレンフィルターに播種し、さらに、10重量ウシ胎仔血清FABを含むEaglesMEM培地を添加した後、37°Cで24時間インキュベートして培養し、8層の積層組織を構築した。得られた積層組織を共焦点レーザー顕微鏡ConfocalLasesrScanningMicroscope:CLSMで観察したところ、図15で示す結果が得られ、第一被覆細胞103aと第二被覆細胞103bとがランダムに積層した8層の積層組織が構築できたことを確認した。実施例6図12で示す三次元構造体を図11に示す方法に従って作製した。第一培養細胞101aとして、ヒト繊維芽細胞Cambrex社製、正常ヒト皮膚繊維芽細胞NHDFを用意し、緑色色素タカラバイオ、CellTrackerGreenFluorescentProbe、PA-3011に着色した。また、第二培養細胞101bとして、ヒト血管内皮細胞Cambrex社製、正常ヒト臍帯静脈血管内皮細胞を用意した。第一培養細胞101a及び第二培養細胞101bのそれぞれの表面に、第1の物質としてフィブロネクチン、第2の物質としてゼラチンを用いて、実施例1と同様な手技により、フィブロネクチンとゼラチンとからなる接着膜102膜厚6nmを成膜した。これにより、ヒト繊維芽細胞が接着膜102で被覆された第一被覆細胞103a、及び、血管内皮細胞が接着膜102で被覆された第二被覆細胞103bを得た。その後、第一被覆細胞103a1.1×106個/cm2セルカルチャーインサートベクトンディッキンソン社製、353090のメンブレンフィルターに播種し、10重量ウシ胎仔血清FABを含むEaglesMEM培地を添加した後、37°Cで24時間インキュベートして培養し、4層の第一の積層構造10を構築した。ついで、実施例1で用いたフィブロネクチン含有緩衝液とゼラチン含有緩衝液への浸積を交互に合計9ステップ行い、フィブロネクチンとゼラチンとが交互に積層されたナノECM30を第一の積層構造10上に作成した。その後、第二の被覆細胞103bを0.2×106個/cm2播種し、10重量ウシ胎仔血清FABを含むEaglesMEM培地を添加した後、37°Cで24時間インキュベートして培養し、ナノECM30上に1層の第二の積層構造20を構築した。ついで、実施例1で用いたフィブロネクチン含有緩衝液とゼラチン含有緩衝液への浸積を交互に合計9ステップ行い、第二の積層構造20上に、フィブロネクチンとゼラチンとが交互に積層されたナノECM30を作成した。さらに、第一被覆細胞103aを1.1×106個/cm2を播種し、10重量ウシ胎仔血清FABを含むEaglesMEM培地を添加した後、37°Cで24時間インキュベートして培養し、ナノECM30上に4層の第一の積層構造10を構築した。得られた三次元構造体を、37°Cで7日間培養した。monoclocalmouseanti-humanCD31抗体製品コード:JC70A、Dako社製及びGoatanti-mouseAlexaFluor546-conjugatedIgG抗体製品コード:A11001、Invitrogen社製にて第二培養細胞101bであるヒト血管内皮細胞を選択的に着色し、培養1日目、及び、7日目の積層組織を、それぞれ、共焦点レーザー顕微鏡ConfocalLaserScanningMicroscope:CLSMで観察した。結果を図16e、f、g、hに示す。図16e、fは、培養1日目を示し、図16g、hが培養7日目を示す。図16fは、図16eの拡大図であり、図16hは、図16gの拡大図である。図16では、血管内皮細胞が白く描出されるように示している。図16e、fで示すように、培養1日目では、血管内皮細胞から血枝が成長しているのが示される。また、図16g、hで示すように、培養7日目には、緻密な血管網が形成されている。図17に第二の積層構造20の平面視で上記共焦点レーザー顕微鏡により観察した結果を示す。第二の積層構造20の断面中、血管網占有面積は、45-60であり、血管網の間隔は、50-100μmであった。実施例7図10で示す三次元構造体を、図11に示す方法に従って作製した。第一培養細胞101aとして、ヒト繊維芽細胞を用意し、第二培養細胞101bとして、ヒト血管内皮細胞を用意した。第二の積層構造20上に、ナノECM30及び第一の積層構造10を形成しない以外は、実施例6と同様にした。得られた三次元構造体を、37°Cで7日間培養した。monoclocalmouseanti-humanCD31抗体製品コード:JC70A、Dako社製及びGoatanti-mouseAlexaFluor546-conjugatedIgG抗体製品コード:A11001、Invitrogen社製にて第二培養細胞101bであるヒト血管内皮細胞を選択的に着色し、培養1日目、及び、7日目の積層組織を、それぞれ、CLSMで観察した。結果を図16a、b、c、dに示す。図16a、bは、培養1日目を示し、図16c、dが培養7日目を示す。図16bは、図16aの拡大図であり、図16dは、図16cの拡大図である。図16では、血管内皮細胞が白く描出されるように示している。図16a~dで示すように、実施例6とは異なり、培養1日目、7日目のいずれも、血枝の成長が観察されず、血管網は観察できなかった。実施例8図13で示す三次元構造体を図11に示す方法に従って作製した。第一培養細胞101aとして、ヒト繊維芽細胞Cambrex社製、正常ヒト皮膚繊維芽細胞NHDFを用意し、緑色色素タカラバイオ、CellTrackerGreenFluorescentProbe、PA-3011に着色した。また、第二培養細胞101bとして、ヒト血管内皮細胞Cambrex社製、正常ヒト臍帯静脈血管内皮細胞を用意した。第一培養細胞101a及び第二培養細胞101bのそれぞれの表面に、第1の物質としてフィブロネクチン、第2の物質としてゼラチンを用いて、実施例1と同様な手技により、フィブロネクチンとゼラチンとからなる接着膜102膜厚6nmを成膜した。これにより、ヒト繊維芽細胞が接着膜102で被覆された第一被覆細胞103a、及び、血管内皮細胞が接着膜102で被覆された第二被覆細胞103bを得た。得られた第一被覆細胞103aを1.1×106個/cm2、及び、第二被覆細胞103bを1.1×106個/cm2、セルカルチャーインサートベクトンディッキンソン社製、353090のメンブレンフィルターに播種した。さらに、10重量ウシ胎仔血清FABを含むEaglesMEM培地を添加した後、37°Cで24時間インキュベートして培養し、5層の積層組織を構築した。得られた三次元構造体を、37°Cで7日間培養した。monoclocalmouseanti-humanCD31抗体製品コード:JC70A、Dako社製及びGoatanti-mouseAlexaFluor546-conjugatedIgG抗体製品コード:A11001、Invitrogen社製にて第二培養細胞101bであるヒト血管内皮細胞を選択的に着色し、培養1日目、及び、7日目の積層組織を、それぞれ、CLSMで観察した。結果を図16i、j、k、lに示す。図16i、jは、培養1日目を示し、図16k、lが培養7日目を示す。図16jは、図16iの拡大図であり、図16lは、図16kの拡大図である。図16では、血管内皮細胞が白く描出されるように示している。図16h、iで示すように、培養1日目は、血枝の成長が観察されなかったが、培養7日目で微量の血枝の成長が観察され、実施例6ほど血管網占有面積は高くないものの、血管網も観察することができた。"