下記のペプチドから選ばれる1又はそれ以上のペプチドを含有する動物細胞培養用培地:AL-システインを含むジペプチド、及び、L-システインを含むジペプチドがジスルフィド結合で結合したジペプチド二量体、並びにBL-チロシンを含むジペプチド但し、アラニルチロシンを除く。前記ペプチドが、X-CysXはL-アミノ酸又はL-アミノ酸誘導体、CysはL-システインを表す、X-Cys2CysはL-システインを表す、又はX‐TyrTyrはL-チロシンを表すから選ばれる、請求項1に記載の培地。前記ペプチドが、Gly-CysGlyはグリシンを表す、及びGly-Cys2から選ばれる、請求項2に記載の培地。前記培地が基本培地であり、培地中のペプチドの濃度が0.01~100mMである、請求項1~3のいずれか一項に記載の培地。前記培地がフィード用である、請求項1~3のいずれか一項に記載の培地。前記ジペプチドの濃度が0.01~1000mMである、請求項5に記載の培地。請求項1~6のいずれか一項に記載の培地で動物細胞を培養することを特徴とする、動物細胞の培養方法。培養中に、請求項5又は6に記載の培地を培養液に添加することを特徴とする、請求項7に記載の方法。目的物質生産能を有する動物細胞を請求項1~6のいずれか一項に記載の培地で培養し、該培地又は細胞から目的物質を回収することを特徴とする、目的物質の製造方法。培養中に、請求項5又は6に記載の培地を培養液に添加することを特徴とする、請求項9に記載の方法。本発明は、チロシンおよび/またはシステインを動物細胞の増殖又は目的物質生産性が向上するように供給することができる動物細胞培養用の培地の提供を目的とする。本発明者らは、上記のような課題を達成すべく鋭意検討を行った結果、L-システイン又はL-チロシンを含む特定のペプチドを培地に添加することによって動物細胞の生育が向上することを見出し、この知見に基づき、本発明を完成するに至った。すなわち、本発明は以下のものを提供する。1下記のペプチドから選ばれる1又はそれ以上のペプチドを含有する動物細胞培養用培地:AL-システインを含むジペプチド、及び、L-システインを含むジペプチドがジスルフィド結合で結合したジペプチド二量体、並びにBL-チロシンを含むジペプチド但し、アラニルチロシンを除く。2前記ペプチドが、X-CysXはL-アミノ酸又はL-アミノ酸誘導体、CysはL-システインを表す、X-Cys2CysはL-システインを表す、又はX‐TyrTyrはL-チロシンを表すから選ばれる、前記培地。3前記ペプチドが、Gly-Cys、及びGly-Cys2から選ばれる、前記培地。4前記培地が基本培地であり、培地中のペプチドの濃度が0.01~100mMである、前記培地。5前記培地がフィード用である、前記培地。6前記ジペプチドの濃度が0.01~1000mMである、前記フィード培地。7前記培地で動物細胞を培養することを特徴とする、動物細胞の培養方法。8培養中に、前記フィード培地を培養液に添加することを特徴とする、前記方法。9目的物質生産能を有する動物細胞を前記培地で培養し、該培地又は細胞から目的物質を回収することを特徴とする、目的物質の製造方法。10培養中に、前記フィード培地を培養液に添加することを特徴とする、前記方法。本発明の培地は、動物細胞の培養及び細胞培養を用いた物質生産に好適に利用できる。チロシンまたはシステインをジペプチドの形態とする事で水溶液中の物性が改善され、効率的に培地中に供給する事が可能となり、細胞の増殖性を向上させる事が出来ると推定される。更には増殖した細胞により生産される目的物質の生産性も向上する事が出来ると考えられる。本発明の培地は、下記のペプチドを含む。AL-システインを含むジペプチド、及び、L-システインを含むジペプチドがジスルフィド結合で結合したジペプチド二量体、並びにBL-チロシンを含むジペプチド但し、アラニルチロシンを除く。ペプチドを構成するL-システイン及びL-チロシン以外のアミノ酸としては、グリシン、アラニン、ロイシン、バリン、イソロイシン、セリン、スレオニン、システイン、メチオニン、アスパラギン、グルタミン、プロリン、ヒドロキシプロリンなどの中性アミノ酸、アスパラギン酸、グルタミン酸などの酸性アミノ酸、リジン、アルギニン、ヒスチジンなどの塩基性アミノ酸、フェニルアラニン、チロシン、トリプトファンなどの芳香族アミノ酸や、ホモセリン、シトリルリン、オルニチン、ホモセリン、シトルリン、オルニチン、αアミノ酪酸、ノルバリン、ノルロイシン、タウリンなどが挙げられる。また、各ペプチドを構成するアミノ酸は、tert-ロイシン、シクロロイシン、α-アミノイソブチル酸、L-ペニシラミンなどの非天然非タンパク質構成アミノ酸であってもよい。尚、いずれもL-体であることが好ましい。前記ジペプチドとして具体的には、XCys、及びCysXXはL-アミノ酸又はL-アミノ酸誘導体、CysはL-システインを表す、並びにXTyr、及びTyrXTyrはL-チロシンを表すが挙げられる。また、前記ジペプチド二量体としては、XCys2、及びCysX2CysはL-システインを表すが挙げられる。XCysとしてはGlyCysグリシル-L-システインが、CysXとしてはCysGlyL-システイニル-グリシンが、XCys2としてはGlyCys2が、CysX2としてはCysGly2が挙げられる。XTyrとしてはグルシル-L-チロシンが、TyrXとしてはL-チロシル-グリシンが挙げられる。XCys、CysX、XCys2、及びCysX2中のXは特に制限されないが、L-システイン以外のアミノ酸又はアミノ酸誘導体であることが好ましい。また、XTyr、及びTyrX中のXは、特に制限されないが、L-チロシン以外のアミノ酸又はアミノ酸誘導体であることが好ましい。好ましいペプチドとしては、GlyCys、2、及びGlyTyrが挙げられる。GlyCys、及び、2は市販されており、例えば、各々CatNoG4440HGlyCysOH、及び、CatNoG18452としてBachem社から購入することができる。前記ジペプチドは公知の合成法、酵素法、又は発酵法により製造することができる。例えば、Zアラニンエステルと無保護グルタミン酸を用いる方法例えば特開平196194号、Zアスパラギン酸とフェニルアラニンのメチルエステルからのZアスパラチルフェニルアラニンメチルエステルの製造方法例えば特開昭5392729号等があげられる。また、ジペプチド二量体は、ジペプチド中のL-システインを酸化してジスルフィド結合を形成させることにより製造することができる。XCysは自然酸化によりXCys2に変換することがあるが、XCysは一部又は全部がXCys2に変換されたものであってもよい。以下の記載において、特記しない限り、ペプチドは上記ジペプチド及びジペプチド二量体を指す。ペプチドを含む培地は、特に制限はないが、公知の動物培養用の培地にペプチドを添加することにより調製することができる。尚、本明細書において、ペプチドを添加していない培地を基礎培地と記載することがある。本発明の培地を用いる培養方法は特に制限されず、バッチ培養、リピートバッチ培養、フェドバッチ培養、連続培養例えばパーフュージョン培養等が挙げられる。培地は、基本培地であってもフィード培地であってもよい。本明細書において基本培地とは、培養開始時の培地をいい、バッチカルチャーではそれに用いる培地を、フェドバッチ培養ではフィード培地を添加する前の初発培地をいう。フィード培地とは、培養開始後、培養中に、基本培地に連続的又は間歇的に添加される培地をいう。基本培地及びフィード培地としては、動物細胞の培養に適しているものであれば特に制限されず、公知のものを用いることができる。具体的には、例えば、DMEM、RPM11640、CHOSSFMIILifeTechnologies社製、CHOSF、EXCELLCDCHO、EXCELLTM302培地、ISCHOCD、ISCHOCDXP以上、IrvineScientific社をあげることができる。調製した培地の滅菌方法は特に制限されないが、濾過滅菌を用いることができる。また、滅菌された培地に滅菌されたペプチドを添加してもよい。基本培地に添加するペプチドの濃度は適宜選択されるものであるが、例えば、001~100mM、又は001~50mMが好ましく、01~20mM、又は1~5mMがより好ましい。フィード培地にペプチドを添加する場合、ペプチドの濃度としては、例えば、001~1000mM、又は001~100mMが好ましく、01~20mM、又は1~5mMがより好ましい。フィード培地には、ペプチドに加えて、他の栄養成分を添加してもよい。培地に添加するペプチドは、1種でもよく、任意の2種以上の組合わせであってもよい。培地が複数種のペプチドを含む場合は、前記濃度はペプチドのそれぞれの濃度であってもよく、合計量の濃度であってもよい。また、ジペプチド二量体の場合は、前記濃度は単量体に換算した濃度である。尚、本発明の培地は、上記ジペプチド又はジペプチド二量体を含む限り、他のペプチドを含んでいてもよい。フェドバッチ培養においては、ペプチドは基本培地又はフィード培地の一方のみに添加してもよく、両方に添加してもよい。また、フィード培地を複数回フィードする場合は、ペプチドは任意のフィード培地に添加してもよく、すべてのフィード培地に添加しても良い。連続培養においては、還流させる培地にペプチドを添加することができる。また、いずれの場合も、殺菌したペプチドの粉体又は溶液を培養液に添加してもよい。フィード培地をフィードするタイミングは適宜選択すればよいが連続的に行っても良く、間欠的に行っても良い。フィードの開始は培養初期からでも良く、培養途中から開始しても良い。フィードの回数は一回でもよく、複数回でもよい。本発明の方法による動物細胞の培養は、培地が特定のペプチドを含む以外は、通常の動物培養の培養と同様にして行うことができる。培地の種類、及び培養条件、例えばpH、温度、通気、培養時間等は、動物細胞に応じて適宜選択することができる。本発明の培地での培養に先立って、必要な細胞数を得るためにシード培養を行ってもよい。動物細胞は、いずれの動物細胞を用いてもよいが、好ましくは哺乳類の動物細胞、より好ましくはヒト、サル等霊長類に由来する動物細胞、またはマウス、ラット、ハムスター等のげっ歯類に由来する細胞を用いることができる。動物細胞が目的物質を生産する能力を有する場合は、該細胞をペプチドの含む培地で培養し、該培地又は細胞から目的物質を回収することにより、目的物質を製造することができる。本発明により製造される物質としては、動物細胞が生産できる物質であればいずれでもよいが、哺乳類に属する動物細胞が生産できる物質であればより好ましく、ペプチド、タンパク質、抗生物質等をあげることができる。培養方法には、バッチ培養、リピートバッチ培養、フェドバッチ培養、パーフュージョン培養等などがあげられる。培養液からの目的物質の採取の方法は特に制限されず、目的物質に応じて公知の方法、例えばイオン交換等の各種クロマトグラフィー、溶媒沈殿法、膜分離法、晶析法等を組み合わせることにより、目的物質を回収することができる。なお、細胞内に目的物質が蓄積する場合には、例えば細胞を超音波などにより破砕し、遠心分離によって細胞残渣を除去して得られる上清から上記方法によって目的物質を回収することができる。以下、本発明を実施例により更に具体的に説明する。実施例1マイクロプレートを用いたCHO細胞の培養における、Lシステイン、グリシルLシステイン、又はビス-グリシル-L-システインを添加した培地の比較CHO細胞ATCCCRL12445を用いて、マイクロプレートでのバッチ培養を行い、Lシステイン、グリシル-L-システイン、及びビスーグリシル-L-システインの培地への添加による効果を比較した。培養の基礎培地としては、CDOptiCHOにLグルタミン8mMを添加した培地を用いた。この培地に、それぞれLシステイン塩酸塩一水和物、グリシルLシステイン4mM、又はビス-グリシル-L-システイン2mMを添加した培地、及び無添加の培地をCHO細胞の培養に用いた。シード培養を行う培地としては、CDOptiCHOにLグルタミン8mMを添加した培地を用いた。125mLの三角フラスココーニング社製に25mLの培地を張り込み、2×105cellsmlになるよう細胞懸濁液を播種した。その後、37°Cで、3~4日間培養し、本培養の播種に必要な細胞数を得られるまで、継代培養を継続した。十分な細胞数を獲得したところで、Lシステイン含有培地、グリシル-L-システイン、又はビスーグリシル-L-システインを含有する培地、及び、無添加培地に、37°C、170rpm、5CO2雰囲気下で、5×105cellsmlになるように細胞懸濁液を播種し、培養試験を行った。培養開始後、7日目に培養液を採取し、細胞密度を測定した。細胞数の測定には、生死細胞オートアナライザーViCELLXRを用いた。実験の結果、CHO細胞ATCCCRL12445の培養開始時に、グリシル-Lシステイン、又はビス-グリシル-L-システインを培地に添加した場合は、無添加の培地、及びLシステイン塩酸塩一水和物を添加した培地を用いた場合に比べ、共に生細胞数が増加することが確認された。無添加の培地での細胞数を100とすると、グリシル-Lシステイン、ビス-グリシル-L-システインを培地に添加した培地では、それぞれ109、125であった図1。実施例2マイクロプレートを用いた各種培地でのCHO細胞の培養における、Lシステイン、及びビス-グリシル-L-システインの添加効果の比較CHO細胞ATCCCRL12445を用いて、マイクロプレートでのバッチ培養を行い、Lシステイン、ビス-グリシル-L-システインの培地への添加による効果を比較した。培養の基礎培地としては、CDOptiCHO、EXCELLCDCHOSigmaAldrich社、ISCHOCDXPIrvineScientific社にそれぞれLグルタミン8mMを添加した培地を用いた。この培地に、それぞれLシステイン塩酸塩一水和物4mM、又はビス-グリシル-L-システイン2mMを添加した培地、及び無添加の培地を用いた。シード培養を行う培地としては、CDOptiCHOにLグルタミン8mMを添加した培地を用いた。125mLの三角フラスココーニング社製に25mLの培地を張り込み、2×105cellsmlになるよう細胞ケンダク液を播種する。その後、37°Cで、3~4日間培養し、本培養の播種に必要な細胞数を得られるまで、継代培養を継続した。十分な細胞数を獲得したところで、Lシステイン含有培地、又はビス-グリシル-L-システインを含有する培地、及び無添加培地に、37°C、170rpm、5CO2雰囲気下で、5×105cellsmlになるように細胞懸濁液を播種し、培養試験を行った。培養開始後、7日目に培養液を採取し、細胞密度を測定した。細胞数の測定には、生死細胞オートアナライザーViCELLXRを用いた。実験の結果、CHO細胞ATCCCRL12445の培養開始時に、ビス-グリシル-L-システインを培地に添加した場合は、無添加の培地を用いた場合に比べ、細胞数が増加することが確認された。また、CDOptiCHO培地に代えて、EXCELLCDCHO、及びISCHOCDXP各々Lグルタミン8mM添加を基礎培地として用いた場合、Lシステイン塩酸塩一水和物を培地に添加した培地を用いた場合では無添加の培地を用いた場合と比較して、細胞数が減少することが確認された。無添加の培地での細胞数を100とすると、ビス-グリシル-L-システインを培地に添加した場合は、基礎培地としてCDOptiCHOを用いた場合では118、EXCELLCDCHOを用いた場合では115、ISCHOCDXPを用いた場合では106であった図2。実施例3マイクロプレートを用いたCHO細胞の培養における、Lチロシン、又はグリシル-L-チロシンを添加した培地の比較CHO細胞ATCCCRL12445を用いて、マイクロプレートでのバッチ培養を行い、Lチロシン、及びグリシル-L-チロシンの培地への添加による効果を比較する。培養の基礎培地としては、CDOptiCHOを用いることができる。基礎培地に、Lグルタミン8mMを添加し、さらに、それぞれLチロシン05~4mM、グリシルーL-チロシン05~4mMを添加した培地を用いる。シード培養を行う培地としては、CDOptiCHOにLグルタミン8mMを添加した培地を用いることができる。125mLの三角フラスコをコーニング社製に25mLの培地を張り込み、2×105cellsmlになるよう細胞懸濁液を播種する。その後、37°Cで、3~4日間培養し、本培養の播種に必要な細胞数を得られるまで、継代培養を継続する。十分な細胞数を獲得したところで、Lチロシン、又はグリシル-L-チロシンを添加した培地を用いて、37°C、170rpm、5CO2雰囲気下で、培養試験を行う。培養開始後、4日目に培養液を採取し、生細胞密度、抗体生産量を測定する。生細胞数の測定には、生死細胞オートアナライザーViCELLXRを用いた。抗体生産量の測定には、ELISA法Bethyl社製キットを用いることができる。実験の結果、CHO細胞ATCCCRL12445の培養開始時に、グリシル-L-チロシンを培地に添加した場合は、無添加、及びLチロシンを培地に添加した場合に比べ、生細胞数及び又は抗体生産量が増加することが確認されると考えられる。実施例4125mLフラスコを用いたCHO細胞の培養における、Lシステイン添加フィード培地及びビス-グリシル-L-システイン添加フィード培地の比較CHO細胞ATCCCRL12445を用いて、125mLフラスコのバッチ培養を行い、Lシステイン、及びビス-グリシル-L-システインのフィード培地への添加による効果を比較する。培養の基礎培地としては、CDOptiCHOに、Lグルタミン8mMを添加した培地を用いることができる。シード培養を行う培地としては、CDOptiCHOにLグルタミン8mMを添加した培地を用いることができる。125mLの三角フラスコをコーニング社製に25mLの基礎培地を張り込み、2×105cellsmlになるよう細胞懸濁液を播種する。その後、37°Cで、3~4日間培養し、本培養の播種に必要な細胞数を得られるまで、継代培養を継続する。十分な細胞数を獲得したところで、基礎培地を用いて、37°C、170rpm、5CO2雰囲気下で、培養試験を開始する。フィード培地には、CHOCDEfficientFeedBLifeTechnologies社を用い、04~16mMのLシステイン塩酸塩一水和物、もしくはグリシルーL-システインを添加した培地、及び無添加の培地を用いる。それぞれ準備されたフィード培地を培養3日目、4日目に15mLずつ添加する。培養開始後、10日目に培養液を採取し、生細胞密度、抗体生産量を測定する。生細胞数の測定には、生死細胞オートアナライザーViCELLXRを用いる。抗体生産量の測定には、ELISA法Bethyl社製キットを用いることができる。実験の結果、ビス-グリシル-L-システインを培地に添加した場合は、無添加、及びLシステインを添加した場合に比べ、生細胞数及び又は抗体生産量が増加することが確認されると考えられる。実施例5125mLフラスコを用いたCHO細胞の培養における、Lチロシン添加フィード培地及びグリシル-L-チロシン添加フィード培地の比較CHO細胞ATCCCRL12445を用いて、125mLフラスコのバッチ培養を行い、Lチロシン、及びグリシル-L-チロシンのフィード培地への添加による効果を比較する。培養の基礎培地としては、CDOptiCHOに、Lグルタミン8mMを添加した培地を用いることができる。シード培養を行う培地としては、CDOptiCHOにLグルタミン8mMを添加した培地を用いることができる。125mLの三角フラスコをコーニング社製に25mLの基礎培地を張り込み、2×105cellsmlになるよう細胞懸濁液を播種する。その後、37°Cで、3~4日間培養し、本培養の播種に必要な細胞数を得られるまで、継代培養を継続する。十分な細胞数を獲得したところで、基礎培地を用いて、37°C、170rpm、5CO2雰囲気下で、培養試験を開始する。フィード培地には、CHOCDEfficientFeedBLifeTechnologies社を用い、05~4mMのLチロシン、もしくは05~4mMのグリシル-L-チロシンを添加した培地と、及び無添加の培地を用いる。それぞれ準備されたフィード培地を培養3日目、4日目に15mLずつ添加する。培養開始後、10日目に培養液を採取し、生細胞密度、抗体生産量を測定する。生細胞数の測定には、生死細胞オートアナライザーViCELLXRを用いる。抗体生産量の測定には、ELISA法Bethyl社製キットを用いることができる。実験の結果、グリシル-L-チロシンをフィード培地に添加した場合は、無添加、及びLチロシンをフィード培地に添加した場合に比べ、生細胞数及び又は抗体生産量が増加することが確認されると考えられる。