"蛍光色素で標識された、下記c~fのいずれかのオリゴヌクレオチドからなる少なくとも1種のプローブを検体中のラクトバチルスLactobacillus属細菌のDNA又はrRNAにハイブリダイズさせる工程、下記aのオリゴヌクレオチド及び下記bのオリゴヌクレオチドからなる核酸プライマーを用いて、検体中のラクトバチルスLactobacillus属細菌のDNA断片を増幅する工程、前記増幅反応により得られた蛍光強度を測定する工程、及び測定した蛍光強度に基づいて検体中のラクトバチルスLactobacillus属細菌を定量する工程、を含む、ラクトバチルスLactobacillus属細菌の定量方法。a配列番号1に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号1に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつラクトバチルスLactobacillus属細菌の16SrDNAの部分塩基配列の増幅に使用できるオリゴヌクレオチドb配列番号2に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号2に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつラクトバチルスLactobacillus属細菌の16SrDNAの部分塩基配列の増幅に使用できるオリゴヌクレオチドc配列番号3に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号3に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつラクトバチルスLactobacillus属細菌の16SrDNAの部分塩基配列にハイブリダイズ可能なオリゴヌクレオチドd配列番号4に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号4に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつラクトバチルスLactobacillus属細菌の16SrDNAの部分塩基配列にハイブリダイズ可能なオリゴヌクレオチドe配列番号5に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号5に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつラクトバチルスLactobacillus属細菌の16SrDNAの部分塩基配列にハイブリダイズ可能なオリゴヌクレオチドf配列番号6に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号6に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつラクトバチルスLactobacillus属細菌の16SrDNAの部分塩基配列にハイブリダイズ可能なオリゴヌクレオチド前記増幅反応をポリメラーゼ連鎖反応PCR法により行う、請求項2記載の定量方法。前記増幅反応及び前記蛍光強度の測定をリアルタイム検出ポリメラーゼ連鎖反応PCR法により行う、請求項1又は2記載の定量方法。前記プローブの5’末端側が蛍光色素で標識され、前記プローブの3’末端側が消光剤で修飾されており、前記プローブがラクトバチルスLactobacillus属細菌のDNAにアニーリニングしている間は前記蛍光色素の発光が前記消光剤により抑制され、DNAポリメラーゼにより前記プローブが分解されると発光の抑制が解除され前記蛍光色素が発光する、請求項1~3のいずれか記載の定量方法。下記aのオリゴヌクレオチド及び下記bのオリゴヌクレオチドからなる核酸プライマー、並びに下記c~fのいずれかのオリゴヌクレオチドからなる少なくとも1種のプローブを含む、ラクトバチルスLactobacillus属細菌の定量キット。a配列番号1に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号1に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつラクトバチルスLactobacillus属細菌の16SrDNAの部分塩基配列の増幅に使用できるオリゴヌクレオチドb配列番号2に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号2に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつラクトバチルスLactobacillus属細菌の16SrDNAの部分塩基配列の増幅に使用できるオリゴヌクレオチドc配列番号3に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号3に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつラクトバチルスLactobacillus属細菌の16SrDNAの部分塩基配列にハイブリダイズ可能なオリゴヌクレオチドd配列番号4に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号4に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつラクトバチルスLactobacillus属細菌の16SrDNAの部分塩基配列にハイブリダイズ可能なオリゴヌクレオチドe配列番号5に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号5に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつラクトバチルスLactobacillus属細菌の16SrDNAの部分塩基配列にハイブリダイズ可能なオリゴヌクレオチドf配列番号6に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号6に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつラクトバチルスLactobacillus属細菌の16SrDNAの部分塩基配列にハイブリダイズ可能なオリゴヌクレオチド前記プローブの5’末端側が蛍光色素で標識され、前記プローブの3’末端側が消光剤で修飾されており、前記プローブがラクトバチルスLactobacillus属細菌のDNAにアニーリニングしている間は前記蛍光色素の発光が前記消光剤により抑制され、DNAポリメラーゼにより前記プローブが分解されると発光の抑制が解除され前記蛍光色素が発光する、請求項5記載の定量キット。本発明は、正確、簡便かつ迅速なラクトバチルス属細菌の定量が可能な、ラクトバチルス属細菌の定量方法を提供することを課題とする。また、本発明はこの方法に適用可能な定量キットを提供することを課題とする。本発明者は、特許文献1~2及び非特許文献1に記載されている、配列番号1及び2に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチドからなる核酸プライマーについて検討を行った。その結果、後述の実施例でも示すように、前記プライマーを用いた場合、ラクトバチルス属細菌だけではなく、ヒトに対する病原性を有する白色ブドウ球菌Staphylococcusepidermidis及び黄色ブドウ球菌Staphylococcusaureusや、ヒトのニキビの原因菌の1種であるプロピオニバクテリウムアクネスPropionibacteriumacnesも検出されることが明らかになった。したがって、特許文献1~2及び非特許文献1に記載のプライマーを用いた従来の方法では、ラクトバチルス属細菌と、白色ブドウ球菌、黄色ブドウ球菌及びプロピオニバクテリウムアクネスとを区別することができず、試料に含まれるラクトバチルス属細菌を正確に定量することができない。さらに、前記方法によりラクトバチルス属細菌を正確に定量するには、ラクトバチルス属細菌の同定工程が必要となり、迅速性に欠ける。上記問題点に鑑み、本発明者は鋭意検討を行った。具体的には、プロピオニバクテリウムアクネスの検出に配列番号3に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチドが用いられているが例えば、EishiY.etal,J.Clin.Microbiol,40,p.198204,2002参照、データベースで検索したところ、プロピオニバクテリウムアクネス以外にラクトバチルス属細菌も配列番号3に記載の塩基配列を有することを見出した。さらに、ラクトバチルス属細菌、白色ブドウ球菌、黄色ブドウ球菌及びプロピオニバクテリウムアクネスのうち、配列番号1~3に記載の塩基配列全てを有するのは、ラクトバチルス属細菌のみであることを見出した。これらの知見に基づき、配列番号1に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド及び配列番号2に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチドからなる核酸プライマー、並びに蛍光色素で標識された配列番号3に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチドからなるプローブを用いて、プローブのハイブリダイゼーション及びDNA断片の増幅反応を行うことでラクトバチルス属細菌の正確な定量が可能となることを見出した。さらには、配列番号3に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチドからなるプローブに代えて、白色ブドウ球菌及び黄色ブドウ球菌の16SrRNAには存在しない、ラクトバチルス属細菌の16SrRNAの特定の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチドからなるプローブを用いることによっても、ラクトバチルス属細菌の正確な定量が可能となることを見出した。本発明はこれらの知見に基づき完成するに至った。本発明は、蛍光色素で標識された、下記c~fのいずれかのオリゴヌクレオチドからなる少なくとも1種のプローブを検体中のラクトバチルスLactobacillus属細菌のDNA又はrRNAにハイブリダイズさせる工程、下記aのオリゴヌクレオチド及び下記bのオリゴヌクレオチドからなる核酸プライマーを用いて、検体中のラクトバチルスLactobacillus属細菌のDNA断片を増幅する工程、前記増幅反応により得られた蛍光強度を測定する工程、及び測定した蛍光強度に基づいて検体中のラクトバチルスLactobacillus属細菌を定量する工程、を含む、ラクトバチルスLactobacillus属細菌の定量方法に関する。a配列番号1に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号1に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつラクトバチルスLactobacillus属細菌の16SrDNAの部分塩基配列の増幅に使用できるオリゴヌクレオチドb配列番号2に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号2に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつラクトバチルスLactobacillus属細菌の16SrDNAの部分塩基配列の増幅に使用できるオリゴヌクレオチドc配列番号3に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号3に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつラクトバチルスLactobacillus属細菌の16SrDNAの部分塩基配列にハイブリダイズ可能なオリゴヌクレオチドd配列番号4に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号4に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつラクトバチルスLactobacillus属細菌の16SrDNAの部分塩基配列にハイブリダイズ可能なオリゴヌクレオチドe配列番号5に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号5に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつラクトバチルスLactobacillus属細菌の16SrDNAの部分塩基配列にハイブリダイズ可能なオリゴヌクレオチドf配列番号6に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号6に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつラクトバチルスLactobacillus属細菌の16SrDNAの部分塩基配列にハイブリダイズ可能なオリゴヌクレオチドまた、本発明は、前記aのオリゴヌクレオチド及び前記bのオリゴヌクレオチドからなる核酸プライマー、並びに前記c~fのいずれかのオリゴヌクレオチドからなる少なくとも1種のプローブを含む、ラクトバチルスLactobacillus属細菌の定量キットに関する。本発明の定量方法によれば、正確、簡便かつ迅速にラクトバチルス属細菌を定量することができる。また、本発明の定量キットは、前記方法に好適に適用することができる。本発明のラクトバチルス属細菌の定量方法は、蛍光色素で標識された、下記c~fのいずれかのオリゴヌクレオチドからなるプローブを検体中のラクトバチルス属細菌のDNA又はrRNAにハイブリダイズさせる工程、下記aのオリゴヌクレオチド及び下記bのオリゴヌクレオチドからなる核酸プライマーを用いて、検体中のラクトバチルス属細菌のDNA断片を増幅する工程、前記増幅反応により得られた蛍光強度を測定する工程、及び測定した蛍光強度に基づいて検体中のラクトバチルスLactobacillus属細菌を定量する工程、を含むものである。a配列番号1に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号1に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつラクトバチルスLactobacillus属細菌の16SrDNAの部分塩基配列の増幅に使用できるオリゴヌクレオチドb配列番号2に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号2に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつラクトバチルスLactobacillus属細菌の16SrDNAの部分塩基配列の増幅に使用できるオリゴヌクレオチドc配列番号3に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号3に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつラクトバチルスLactobacillus属細菌の16SrDNAの部分塩基配列にハイブリダイズ可能なオリゴヌクレオチドd配列番号4に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号4に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつラクトバチルスLactobacillus属細菌の16SrDNAの部分塩基配列にハイブリダイズ可能なオリゴヌクレオチドe配列番号5に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号5に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつラクトバチルスLactobacillus属細菌の16SrDNAの部分塩基配列にハイブリダイズ可能なオリゴヌクレオチドf配列番号6に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチド、又は配列番号6に記載の塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入若しくは付加されておりかつラクトバチルスLactobacillus属細菌の16SrDNAの部分塩基配列にハイブリダイズ可能なオリゴヌクレオチド本発明の方法によれば、従来のラクトバチルス属細菌の検出方法においてラクトバチルス属細菌とともに検出される白色ブドウ球菌、黄色ブドウ球菌及びプロピオニバクテリウムアクネスと、ラクトバチルス属細菌とを明確に区別でき、被検体に含まれるラクトバチルス属細菌を網羅的に定量することができる。なお、本発明において、ラクトバチルス属細菌の定量とは、被検体におけるラクトバチルス属細菌密度の定量、被検体におけるラクトバチルス属細菌由来のDNA量の定量、などを特徴的に指すものとする。また、本明細書においてストリンジェントな条件とは、例えばMolecularCloning-ALABORATORYMANUALTHIRDEDITION[JosephSambrookDavidWRussellColdSpringHarborLaboratoryPress]記載の方法が挙げられ、例えば、6×SSC1×SSCの組成:015M塩化ナトリウム、0.015Mクエン酸ナトリウム、pH7.0、0.5SDS、5×デンハート及び100mg/mLニシン精子DNAを含む溶液にプローブとともに65°Cで8~16時間恒温し、ハイブリダイズさせる条件が挙げられる。本発明におけるラクトバチルス属細菌とは、グラム陽性桿菌であり、乳酸を産生する微生物の総称である。ラクトバチルス属細菌としては、下記のものが知られているが、本発明はこれらに制限するものではない。発明者等は、図1~5及び後述の実施例で示すように、ラクトバチルス属細菌、並びに白色ブドウ球菌、黄色ブドウ球菌及びプロピオニバクテリウムアクネスの16SrRNAの塩基配列の解析を行った。その結果、ラクトバチルス属細菌に特異的な16SrRNAの領域を見い出した。そして、この可変領域にハイブリダイズ可能な少なくとも3種のオリゴヌクレオチドを用いることにより、ラクトバチルス属細菌の正確な定量が可能となることを見い出した。本発明に用いるオリゴヌクレオチドが認識する、ラクトバチルス属細菌類、白色ブドウ球菌、黄色ブドウ球菌及びプロピオニバクテリウムアクネスの16SrRNAの塩基配列を図1~5及び配列番号7~11に記載の塩基配列に基づき説明する。なお、配列番号7~11に記載の塩基配列は、それぞれ、ラクトバチルスアシドフィルスLactobacillusacidophilusJCM1132株の16SrRNAの部分塩基配列、ラクトバチルスデルブレッキイ亜種ラクティスLactobacillusdelbrueckiisubsp.lactisBCRC11051株の16SrRNAの全塩基配列、スタフィロコッカスエピデルミディスStaphylococcusepidermidisATCC14990株の16SrRNAの部分塩基配列、スタフィロコッカスアウレウス亜種アウレウスStaphylococcusaureussubsp.aureusATCC12600株の16SrRNAの部分塩基配列及びプロピオニバクテリウムアクネスPropionibacteriumacnesJCM6473株の16SrRNAの部分塩基配列を示す。前記aのオリゴヌクレオチド本明細書において、Lac1primerともいう及び前記bのオリゴヌクレオチド本明細書において、Lac2primerともいうはそれぞれ、図1~2に示すように、配列番号7に記載の塩基配列のうち333位~351位までの領域及び660位~677位までの領域、並びに配列番号8に記載の塩基配列のうち367位~385位までの領域及び694位~711位までの領域にストリンジェントな条件でハイブリダイズ可能なオリゴヌクレオチドである。なお、前記bのオリゴヌクレオチドはそれぞれ、図3~4に示すように、配列番号9及び10に記載の塩基配列のうち662位~679位までの領域にストリンジェントな条件でハイブリダイズ可能である。しかし、配列番号9及び10に記載の塩基配列には、前記aのオリゴヌクレオチドがハイブリダイズ可能な領域は存在しない。さらに、図5に示すように、配列番号11に記載の塩基配列には、前記a及びbのオリゴヌクレオチドがハイブリダイズ可能な領域は存在しない。前記cのオリゴヌクレオチド本明細書において、Lac3probeともいうは、図1~2に示すように、配列番号7に記載の塩基配列のうち527位~550位までの領域及び配列番号8に記載の塩基配列のうち561位~584位までの領域にストリンジェントな条件でハイブリダイズ可能なオリゴヌクレオチドである。なお、図3~4に示すように、配列番号9及び10に記載の塩基配列には、前記cのオリゴヌクレオチドがハイブリダイズ可能な領域は存在しない。また、前記cのオリゴヌクレオチドは、図5に示すように、配列番号11に記載の塩基配列のうち518位~541位までの領域にストリンジェントな条件でハイブリダイズ可能である。上記16SrRNAの塩基配列の解析結果に基づき、蛍光色素で標識された、前記cのオリゴヌクレオチドからなるプローブを検体中のラクトバチルス属細菌のDNA又はrRNAにハイブリダイズさせ、前記a及びbのオリゴヌクレオチドからなる核酸プライマーを用いて検体中のラクトバチルス属細菌のDNA断片を増幅反応を行い、該増幅反応によって発光する蛍光の強度を検出することにより、白色ブドウ球菌、黄色ブドウ球菌及びプロピオニバクテリウムアクネスと、ラクトバチルス属細菌とを明確に区別して検体中のラクトバチルス属細菌を網羅的に定量する。さらに、後述の実施例でも示すように、ラクトバチルス属細菌の16SrRNAの塩基配列を解析した結果、ほぼ全てのラクトバチルス属細菌の16SrRNAの塩基配列中に、前記c~fのいずれかのオリゴヌクレオチドの塩基配列と同じ配列が、前記aのオリゴヌクレオチドがハイブリダイズ可能な領域と前記bのオリゴヌクレオチドがハイブリダイズ可能な領域との間に存在することが明らかとなった。したがって、前記cのオリゴヌクレオチドからなるプローブに代えて、前記d、e又はfからなるプローブを用いても、白色ブドウ球菌、黄色ブドウ球菌及びプロピオニバクテリウムアクネスと、ラクトバチルス属細菌とを明確に区別して検体中のラクトバチルス属細菌とを網羅的に定量することができることを見い出した。本発明に用いる前記オリゴヌクレオチドa~fは、それぞれ配列番号1~6のいずれかに記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチドが好ましい。また、本発明に用いるオリゴヌクレオチドは、配列番号1~6のいずれかに記載の塩基配列に対して70以上の相同性を有する塩基配列で表されるオリゴヌクレオチドであってもよく、相同性が80以上であることがより好ましく、相同性が90以上であることがさらに好ましく、相同性が95以上であることが特に好ましい。また、本発明に用いるオリゴヌクレオチドは、配列番号1~6のいずれかに記載の塩基配列において1若しくは数個好ましくは1から5個、より好ましくは1から4個、さらに好ましくは1から3個、よりさらに好ましくは1から2個、特に好ましくは1個の塩基の欠失、置換、挿入又は付加されており、かつラクトバチルス属細菌の16SrDNAの部分塩基配列の増幅に使用できるオリゴヌクレオチド又はハイブリダイズ可能なオリゴヌクレオチドであってもよい。また、前記オリゴヌクレオチドa~fに、適当な塩基配列を付加してもよい。塩基配列の相同性については、Lipman-Pearson法Science,227,1435,1985等によって計算される。具体的には、遺伝情報処理ソフトウェアGenetyxWinソフトウェア開発製のホモロジー解析Searchhomologyプログラムを用いて、パラメーターであるUnitsizetocompareを2として解析を行うことにより算出することができる。前記オリゴヌクレオチドの結合様式は、天然の核酸に存在するホスホジエステル結合だけでなく、例えばホスホロアミデート結合、ホスホロチオエート結合等であってもよい。前記オリゴヌクレオチドは、例えばDNA自動合成機等を用いた化学合成等の通常の合成方法により調製したり、試薬メーカーから購入することができる。また、ラクトバチルス属細菌の遺伝子から制限酵素等を用いて直接切り出したり、また遺伝子をクローニングして単離精製した後、制限酵素などを用いて切り出して調製することも可能である。操作の容易さ、大量かつ安価に一定品質のオリゴヌクレオチドを得られる点から化学合成により調製するのが好ましい。また、合成後、吸着カラム、高速液体クロマトグラフィーや電気泳動法を用いて精製したものを用いることもできる。また、1ないし数個の塩基が置換、欠失、挿入若しくは付加された塩基配列を有するオリゴヌクレオチドについても、通常の方法を使用して合成できる。前記プローブの標識に用いる蛍光色素は、オリゴヌクレオチドを標識して、核酸の測定及び検出に通常用いられるものを使用できる。具体的には、フルオレセインfluorescein又はその誘導体類例えば、カルボキシフルオレセインFAMやテトラクロロフルオレセインTET、ヘキサクロロフルオレセインHEX又はこれらの誘導体、Alexa類、Cy3、Cy5、ローダミンrhodamine又はその誘導体例えば、ローダミン6GR6G、ローダミンB、ローダミン6GP、ローダミン3GO、5-カルボキシローダミン6GCR6G、テトラメチルローダミンTAMRA等、テキサスレッドTEXASred、ボデピーBODIPY類商標名;モレキュラープローブMolecularProbes社製、米国、ROX、JOE、BHQ類が挙げられる。このうち、フルオレセイン又はその誘導体類が好ましく、FAMがより好ましい。オリゴヌクレオチドを蛍光色素で標識するには、通常の標識法のうちの所望のものを利用することができる例えば、NatureBiotechnology、第14巻、第303~308頁、1996年;AppliedandEnvironmentalMicrobiology、第63巻、第1143~1147頁、1997年;NucleicacidsResearch、第24巻、第4532~4535頁、1996年参照。例えば、5’末端に蛍光色素を結合させる場合は、先ず常法に従って5’末端のリン酸基にスペーサーとして、例えば、-n-SH基を導入する。この場合、nは3~8の整数、好ましくは6である。このスペーサーにSH基反応性を有する蛍光色素又はその誘導体を結合させることにより標識したオリゴヌクレオチドを合成できる。また、オリゴヌクレオチドの3’末端に蛍光色素を結合させることもできる。この場合は、リボース又はデオキシリボースの3’位CのOH基にスペーサーとして、例えば、-n-NH2基を導入する。また、リン酸基を導入して、リン酸基のOH基にスペーサーとして、例えば-n-SH基を導入する。これらの場合、nは3~8、好ましくは4~7の整数である。このスペーサーにアミノ基、SH基に反応性を有する蛍光体基又はその誘導体を結合させることにより標識したオリゴヌクレオチドを合成できる。また、核酸プローブの鎖内に蛍光色素分子を導入することも可能である例えば、AnalyticalBiochemistry、第225巻、第32-38頁1998年参照。このようにして合成された蛍光色素で標識されたオリゴヌクレオチドは、逆相等のクロマトグラフィー等で精製して本発明で使用する核酸プローブとすることができる。本発明に用いるプローブは、発光が抑制された蛍光色素で標識されたオリゴヌクレオチドであり、ラクトバチルス属細菌のDNA断片の標的配列にハイブリダイズし、該配列の増幅反応により該蛍光色素が発光し、増幅反応中に蛍光が減衰しないものが好ましい。標的核酸にハイブリダイズしたときに蛍光の発光を抑制するには通常の方法を採用することができる。例えば、2つの末端の一方が蛍光色素で標識され他方が消光剤で修飾されたプローブを用いる方法、蛍光標識されたプローブの末端においてグアニンGとシトシンCの塩基対形成時に蛍光発光が抑制される蛍光物質を用いる方法、などを採用することができる。2つの末端の一方が蛍光色素で標識され他方が消光剤で修飾されたプローブを用いる場合、前記消光剤としては、その吸収スペクトルと前記蛍光色素の蛍光スペクトルとがオーバーラップするものが好ましく、具体的には、DNP、TAMRA、DABCYL、BHQ類商標名、BiosearchTechnologies社製、QXL520等のQXL類商標名;AnaSpec社、IowablackFQ商品名、IowablackRQ商品名、BODIPYFL及びQSY7dyeが挙げられ、DNP、TAMRAが好ましく、TAMRAがより好ましい。蛍光標識されたプローブの末端においてグアニンGとシトシンCの塩基対形成時に蛍光発光が抑制される蛍光色素を用いる場合、前記蛍光色素の具体例としては、フルオロセイン又はその誘導体例えば、FITC、ボデピー類、ローダミン又はその誘導体例えば、CR6G、TAMRAなどが挙げられる。本発明に用いるプローブは、2つの末端の一方が蛍光色素で標識され他方が消光剤で修飾されたプローブが好ましく、5’末端側が蛍光色素で標識され、3’末端側が消光剤で修飾されており、ラクトバチルス属細菌のDNAにアニーリニングしている間は前記蛍光色素の発光が前記消光剤により抑制され、DNAポリメラーゼにより前記プローブが分解されると発光の抑制が解除され前記蛍光色素が発光するプローブがより好ましい。本発明において、前記c~fのいずれかのオリゴヌクレオチドからなる1種又は2種以上のプローブを用いることができる。本発明において、前記プローブをラクトバチルス属細菌のDNA又はrRNAにハイブリダイズさせる条件としては特に制限はない。本発明において、前記a及びbのオリゴヌクレオチドからなる核酸プライマーを用いて、検体中のラクトバチルス属細菌のDNA断片の増幅を行う。DNA断片を増幅する方法として特に制限はなく、ポリメラーゼ連鎖反応PCR法、LCRLigaseChainReaction法、SDAStrandDisplacementAmplification法、NASBANucleicAcidSequencebasedAmplification法、RCARollingcircleamplification法、LAMPLoopmediatedisothermalamplification法など通常の方法を用いることができる。本発明においては、PCR法を用いるのが迅速性及び簡便性の観点から好ましい。PCR反応の条件は、目的のDNA断片を検出可能な程度に増幅することができれば特に制限されない。PCRの反応条件の好ましい一例としては、例えば、2本鎖DNAを1本鎖にする熱変性反応を90~98°Cで1秒間~15分間行い、プライマー対を1本鎖DNAにハイブリダイズさせるアニーリング反応及びDNAポリメラーゼを作用させる伸長反応を50~70°Cで10~90秒間行い、これらを1サイクルとしたものを約20~40サイクル行う。PCR反応に用いるDNAポリメラーゼとしては特に制限はなく、一般的に核酸増幅反応に使用できるものであればよい。例えば、TaqDNAポリメラーゼ、KODDNAポリメラーゼなどが挙げられる。DNAポリメラーゼの中には、エキソヌクレアーゼ活性を有するものがある。しかし、このようなDNAポリメラーゼを用いると、増幅反応中に標識プローブを分解し、分解された標識プローブが非特異的にDNAにハイブリダイズする場合がある。したがって、本発明において、エキソヌクレアーゼ活性を持たないDNAポリメラーゼ、例えば、KODDNAポリメラーゼを用いるのが好ましい。本発明において、前記増幅反応の際又は前記増幅反応の後、増幅反応により、プローブがハイブリダイズする標的核酸から遊離した蛍光色素の蛍光強度を測定する。蛍光強度の測定手段としては特に制限はなく、蛍光顕微鏡等通常の手段を採用することができる。また、本発明において、前記増幅反応と蛍光強度の測定を同時リアルタイムに行う方法例えば、リアルタイム検出ポリメラーゼ連鎖反応PCR法により行ってもよい。本発明において使用される検体としては特に制限はなく、飲食品自体、飲食品の原材料、単離菌体、培養菌体等を用いることができる。検体からDNAを調製する方法としては、ラクトバチルス属細菌の定量を行うのに十分な精製度及び量のDNAが得られるのであれば特に制限されず、未精製の状態でも使用できるが、さらに分離、抽出、濃縮、精製等の前処理をして使用することもできる。例えば、フェノール及びクロロホルム抽出を行って精製したり、市販の抽出キットを用いて精製して、核酸の純度を高めて使用することができる。また、被検体中のRNAを逆転写して得られるDNAを用いることもできる。本発明のラクトバチルス属細菌の定量キットは、前記aのオリゴヌクレオチド及び前記bのオリゴヌクレオチドからなる核酸プライマー、並びに前記c~fのいずれかのオリゴヌクレオチドからなる少なくとも1種のプローブを含むものである。このキットは、ラクトバチルス属細菌の定量方法に用いることができる。本発明のキットは、前記核酸プローブ及びプライマーの他に、目的に応じ、標識検出物質、緩衝液、核酸合成酵素DNAポリメラーゼ、RNAポリメラーゼ、逆転写酵素等、酵素基質dNTP,rNTP等等、細菌類の検出に通常用いられる物質を含有する。以下、本発明を実施例に基づきさらに詳細に説明するが、本発明はこれに限定されるものではない。試験例1インターネット上でRibosomalDatabaseProjectIIRDPIIhttprdpcmemsueduに公開されている解析ソフトProbemachを用いて、同データベースに登録されているラクトバチルス属細菌の16SrRNAの塩基配列に、配列番号1及び2に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチドがハイブリダイズ可能な領域、並びに配列番号1に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチドがハイブリダイズ可能な領域の下流及び/又は配列番号2に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチドがハイブリダイズ可能な領域の上流に配列番号3~6のいずれかに記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチドがハイブリダイズ可能な領域が含まれているかの確認を行った。なお、解析方法は解析ソフトの操作方法に従った。その結果を表2~4に示す。表2~4において、ラクトバチルス属細菌の16SrRNAの塩基配列に配列番号1~6のいずれかに記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチドがハイブリダイズ可能な領域が含まれている場合は○、含まれていない場合-と記載した。さらに、同データベースに登録されているブドウ球菌科細菌、ブドウ球菌属細菌、乳酸桿菌科細菌、ラクトバチルス属細菌、エンテロコッカス科細菌、ロイコノストック科細菌、連鎖球菌科細菌及びプロピオニバクテリア科細菌の数、並びに、配列番号1~6のいずれかに記載の各塩基配列で表されるオリゴヌクレオチドがハイブリダイズ可能な領域が16SrRNAの塩基配列に含まれている細菌の数を確認した。その結果を表5~6に示す。表2~5に示したように、ほぼ全てのラクトバチルス属細菌の16SrRNAの塩基配列に、配列番号1及び2に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチドがハイブリダイズ可能な領域、並びに配列番号1に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチドがハイブリダイズ可能な領域の下流及び配列番号2に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチドがハイブリダイズ可能な領域の上流に配列番号3~6のいずれかに記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチドがハイブリダイズ可能な領域が含まれることが明らかとなった。これに対して、表5及び6に示したように、配列番号1及び2に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチドがハイブリダイズ可能な領域、並びに配列番号1に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチドがハイブリダイズ可能な領域の下流及び配列番号2に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチドがハイブリダイズ可能な領域の上流に配列番号3~6のいずれかに記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチドがハイブリダイズ可能な領域、の両者とも16SrRNAの塩基配列に含むラクトバチルス属細菌以外の細菌類は存在しない。このように、16SrRNAの塩基配列に、配列番号1及び2に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチドがハイブリダイズ可能な領域、並びに配列番号1に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチドがハイブリダイズ可能な領域の下流及び配列番号2に記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチドがハイブリダイズ可能な領域の上流に配列番号3~6のいずれかに記載の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチドがハイブリダイズ可能な領域が含まれるのは、ラクトバチルス属細菌に限られることが判明した。実施例1プライマーの設計配列番号1の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチドからなるプライマーLac1primer及び配列番号2の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチドからなるプライマーLac2primerを設計し、つくばオリゴ株に合成依頼し脱塩精製品、002μmolスケール、購入した。また、配列番号3の塩基配列で表されるオリゴヌクレオチドからなるプローブLac3probe5’末端を蛍光色素FAMで修飾し、3’末端を消光剤TAMRAで修飾したTaqManPCR用プローブを、つくばオリゴ株に合成依頼し入手した。2検体の調製本発明の有効性の評価に用いる微生物としては、白色ブドウ球菌JCM2414T株、黄色ブドウ球菌JCM2413株、プロピオニバクテリウムアクネスJCM6425株、ラクトバチルスアシドフィルスJCM1021株、ラクトバチルスデルブレッキイ亜種ラクティスJCM1107株を用いた。白色ブドウ球菌JCM2414T株、黄色ブドウ球菌JCM2413株及びプロピオニバクテリウムアクネスJCM6425株は、SCDLP寒天培地日本製薬社製にて37°Cで1日培養した。ラクトバチルスアシドフィルスJCM1021株及びラクトバチルスデルブレッキイ亜種ラクティスJCM1107株は、MRS寒天培地和光純薬社製にて37°Cで2日間培養した。3ゲノムDNAの調製各菌体を寒天培地から白金耳を用いて回収し、PBS溶液1mLに懸濁後、14000rpmにて3分間遠心分離を行い、さらに上清を除去して、菌体を回収した。回収した菌体に、下記表7に示す組成のDNAIsilationbuffer200μL、フェノール/クロロホルム/イソアミルアルコール水溶液25241volvolvol、Invitrogen社200μL及び高圧滅菌したガラスビース粒径約0.1mm、アズワン社300mgを添加し、ボルテックスにて5分間攪拌した。14000rpm、20°Cで10分間遠心分離を行い、水相150μLを回収した。この水相に共沈剤エタ沈メイト、和光純薬工業社1μL及び3M酢酸ナトリウムバッファーpH5215μLを添加した。さらに、100エタノールを375μL回収量の2.5倍量加え、14000rpm、4°Cで10分間、遠心分離してDNAペレットとし、上清を除去した。沈殿に70エタノール200μLを添加し、14000rpm、4°Cで10分間遠心分離して沈殿の洗浄を行った。上清を除去して回収したDNAペレットを滅菌水50μLに再溶解し、回収したDNAを精製した。なお、前記DNAIsilationbufferは、10Triton-X溶液2mL、10mMEDTA溶液1mL、1MNaCl溶液1mL、10SDS溶液1mL、100mMTris-HClpH80溶液1mL及び滅菌水4mLを混合し、フィルター滅菌して調製した。4ラクトバチルス属細菌の定量前記3で調製したゲノムDNA溶液をDNAテンプレートとし、下記組成のPCR反応液を調製した。PCR反応液ゲノムDNA溶液5μLTaqManUniversalPCRMasterMixDNAポリメラーゼ試薬、商品名、アプライドバイオシステムズ社15μLLac1primer配列番号1250nMLac2primer配列番号2250nMLac3probe配列番号3100nM滅菌水バランス全量30μL前記PCR反応液について、下記PCR条件で、リアルタイム検出ポリメラーゼ連鎖反応PCR法によりPCR反応を行い、下記蛍光検出装置及び制御ソフトウェアを用いてDNA量の定量を行っった。<PCR条件>1変性温度:95°C、10分2変性温度:95°C、15秒3アニール及び伸長反応温度:60°C、60秒上記2~3の反応を最大40サイクル繰り返した。<蛍光検出装置>7500RealTimePCRSystem商品名、アプライドバイオシステムズ社<制御ソフトウェア>7500SystemSDSSoftware商品名、アプライドバイオシステムズ社定量結果を図6に示す。図6の結果からも明らかなように、前記a及びbのオリゴヌクレオチドからなる核酸プライマー、並びに前記c~fのいずれかのオリゴヌクレオチドからなる少なくとも1種のプローブを組み合わせて用いることにより、白色ブドウ球菌、黄色ブドウ球菌及びプロピオニバクテリウムアクネスの16SrRNA断片を増幅させることなくラクトバチルス属細菌の16SrDNA断片のみが増幅され、DNA断片の増幅に伴って傾向強度も増大し、正確な乳酸菌の定量が可能となることが確認された。比較例DNAポリメラーゼ試薬としてTaqManUniversalPCRMasterMixに代えてPowerSYBRGreenMasterMix商品名、アプライドバイオシステムズ社を用い、Lac3probeをPCR反応液には添加しなかったこと以外は同様にして、実施例と同様の試験操作を行った。その結果を図7に示す。図7の結果からも明らかなように、前記a及びbのオリゴヌクレオチドからなる核酸プライマーのみを用いてDNA断片の増幅を行った場合、ラクトバチルス属細菌だけではなく、白色ブドウ球菌、黄色ブドウ球菌及びプロピオニバクテリウムアクネスの16SrRNAも増幅されてしまう。したがって、前記a及びbのオリゴヌクレオチドからなる核酸プライマーを用いた従来のラクトバチルス属細菌の検出方法では、ラクトバチルス属細菌を特異的に検出することはできず、ラクトバチルス属細菌の定量を正確に行うこともできない。"