"母体又は腫瘍患者体内から血液を採取する器具と、前記血液中の血細胞と血漿を分離させるに適する器具と、前記血漿中のDNAを抽出する試薬及び器具と、物理方法で、前記DNAの断片のサイズに応じてそれを分離する試薬及び器具と、100bp~250bp間のいずれかの一点又はいずれかの一つの区間の全てのDNAを選択してシークエンシングを行う試薬及び器具と、を含む胎芽又は腫瘍染色体のコピー数を検出する試薬カートリッジ。前記胎芽又は腫瘍染色体が全本の染色体又は一部の染色体である請求項1に記載の試薬カートリッジ。前記DNAをシークエンシング用のライブラリに作成する試薬及び器具をさらに含む請求項1に記載の試薬カートリッジ。前記DNAをシークエンシング用のライブラリに作成する試薬及び器具をさらに含む請求項2に記載の試薬カートリッジ。前記シークエンシング用のライブラリに対してPCR増幅を行う試薬及び器具をさらに含む請求項4に記載の試薬カートリッジ。前記100~250bp間のいずれかの一点又はいずれかの一つの区間のDNAが150bp~170bpのDNAである請求項1又は5に記載の試薬カートリッジ。前記100~250bp間のいずれかの一点又はいずれかの一つの区間のDNAが167bpのDNAである請求項6に記載の試薬カートリッジ。母体又は腫瘍患者体内から血液を採取する器具と、前記血液中の血細胞と血漿を分離させるに適する器具と、前記血漿中のDNAを抽出する試薬及び器具と、前記DNAをシークエンシング用のライブラリに作成するための試薬及び器具と、前記DNAに対してシークエンシングを行う試薬及び器具とを、含む胎芽又は腫瘍染色体のコピー数を検出する試薬カートリッジ。前記胎芽又は腫瘍染色体が全本の染色体又は一部の染色体である請求項8に記載の試薬カートリッジ。血漿から抽出した前記DNAに対してPCR増幅を行う試薬及び器具をさらに含む請求項8に記載の試薬カートリッジ。母体の血漿サンプル又は腫瘍患者の血漿サンプル中のDNAに対してシークエンシングを行う検出モジュールと、前記DNAのシークエンシング結果と染色体組配列図譜とを比較して、前記DNA中の各DNA断片が何番の染色体からのものであるか、及び前記各DNA断片の配列長さを確定する比較モジュールと、同一のサンプル中の検出対象染色体からのDNA断片の数量がDNA断片の総数を占める割合を計算し、前記検出対象染色体からのDNA断片のGC含有量に基づいて前記割合を補正し、また、検出対象サンプルにおける前記検出対象染色体からのDNA断片の補正後の割合の変異を計算し、前記変異レベルに基づいて検出対象染色体のコピー数を確定する計算モジュールと、前記検出対象染色体のコピー数を出力する出力モジュールと、を含む胎芽又は腫瘍染色体のコピー数を検出する装置。第2、3、4、5、6、7、8、12、13、18、X番の染色体からのDNA断片のGC含有量がそれぞれ、各染色体からのDNA断片が総DNA断片を占める割合と一定の線形関係、即ちy=axbの線形関係を有し、前記計算モジュールが、当該関数に従って第2、3、4、5、6、7、8、12、13、18、X番の染色体の割合を補正する請求項11に記載の装置ここで、yは検出対象染色体からのDNA断片のGC含有量を示し、xは検出対象染色体からのDNA断片の数量が総DNAを占める割合を示し、aとbは常数であって、且つaは負数である。前記第2、3、4、5、6、7、8、12、13、18、X番の染色体からのDNA断片のGC含有量と各染色体からのDNA断片が総DNA断片を占める割合との間の線形関係が以下の表1のとおりである請求項12に記載の装置。第1、9、10、11、15、16、17、19、20、21、22番の染色体からのDNA断片のGC含有量がそれぞれ、各染色体からのDNA断片が総DNA断片を占める割合と一定の線形関係、即ちy=axbの線形関係を有し、前記計算モジュールが当該関数に従って第1、9、10、11、15、16、17、19、20、21、22番の染色体の割合を補正する請求項11に記載の装置ここで、yは検出対象染色体からのDNA断片のGC含有量を示し、xは検出対象染色体からのDNA断片の数量が総DNAを占める割合を示し、aとbは常数であって、且つaは正数である。前記第1、9、10、11、15、16、17、19、20、21、22番の染色体からのDNA断片のGC含有量と各染色体からのDNA断片が総DNA断片を占める割合との間の線形関係が以下の表2通りである請求項14に記載の装置。前記検出モジュールが、母体の血漿サンプル又は腫瘍患者の血漿サンプル中の全てのDNAをシークエンシング用のライブラリに作成する請求項11乃至15の中のいずれかに記載の装置。前記母体の血漿サンプル又は腫瘍患者の血漿サンプル中のDNAに対するシークエンシングが、双端短配列シークエンシング、単端長配列シークエンシング又は単端短配列シークエンシングである請求項11に記載の装置。前記胎芽又は腫瘍染色体が全本の染色体又は一部の染色体である請求項11に記載の装置。前記母体の血漿サンプル又は腫瘍患者の血漿サンプル中のDNAに対して、シークエンシングを行う前にPCR増幅を行う請求項17に記載の装置。計算モジュールが、同一のサンプル中の100bp~250bp間のいずれかの一点又はいずれかの一つの区間の全てのDNAの中の、検出対象染色体からのDNA断片の数量が100bp~250bp間のいずれかの一点又はいずれかの一つの区間の全てのDNA断片の総数を占める割合を計算し、100bp~250bp間のいずれかの一点又はいずれかの一つの区間の全てのDNA中の検出対象染色体からのDNA断片のGC含有量に基づいて前記割合を補正し、また、検出対象サンプルにおける前記検出対象染色体からのDNA断片の補正後の割合の変異を計算し、前記変異レベルに基づいて検出対象染色体のコピー数を確定する請求項19に記載の装置。前記母体の血漿サンプル又は腫瘍患者の血漿サンプル中の100bp~250bp間のいずれかの一点又はいずれかの一つの区間の全てのDNAをシークエンシング用のライブラリに作成する請求項20に記載の装置。前記母体の血漿サンプル又は腫瘍患者の血漿サンプル中のDNAを、シークエンシング用のライブラリに作成される前又はその後にPCR増幅を行う請求項21に記載の装置。前記100~250bp間のいずれかの一点又はいずれかの一つの区間のDNAが150bp~170bpのDNAである請求項20に記載の装置。前記100~250bp間のいずれかの一点又はいずれかの一つの区間のDNAが167bpのDNAである請求項23に記載の装置。母体血漿又は腫瘍患者血漿を採取することと、前記血液中の血漿と血細胞を分離することと、前記血漿中のDNAをシークエンシング用のライブラリに作成することと、前記DNAライブラリに対してシークエンシングを行うことと、前記シークエンシングの結果と染色体組配列図譜とを比較して各断片の前記DNA配列が何番の染色体からのものであるか、及び各断片の前記DNA配列の長さを確定することと、前記DNAのシークエンシング及び比較結果に基づいて、同一のサンプル中の検出対象染色体からのDNA断片の数量がDNA断片の総数を占める割合を計算し、前記検出対象染色体からのDNA断片のGC含有量に基づいて前記割合を補正し、また、検出対象サンプルにおける前記検出対象染色体からのDNA断片の補正後の割合の変異を計算し、前記変異レベルに基づいて検出対象染色体のコピー数を確定することを含む胎芽又は腫瘍染色体のコピー数を検出する方法。以下の関数に従って、第2、3、4、5、6、7、8、12、13、18、X番の染色体からのDNA断片のGC含有量がそれぞれ、各染色体からのDNA断片が総DNA断片を占める割合と一定の線形関係、即ちy=axbの線形関係を有し、当該関数に従って第2、3、4、5、6、7、8、12、13、18、X番の染色体の割合を補正する請求項25に記載の方法ここで、yは検出対象染色体からのDNA断片のGC含有量を示し、xは検出対象染色体からのDNA断片の数量が総DNAを占める割合を示し、aとbは常数であって、且つaは負数である。前記第2、3、4、5、6、7、8、12、13、18、X番の染色体からのDNA断片のGC含有量と各染色体からのDNA断片が総DNA断片を占める割合との間の線形関係が請求項13に記載の通りである請求項26に記載の方法。第1、9、10、11、15、16、17、19、20、21、22番の染色体からのDNA断片のGC含有量がそれぞれ、各染色体からのDNA断片が総DNA断片を占める割合と一定の線形関係、即ちy=axbの線形関係を有し、当該関数に従って、第1、9、10、11、15、16、17、19、20、21、22番の染色体の割合に補正を行う請求項25に記載の方法ここで、yは検出対象染色体からのDNA断片のGC含有量を示し、xは検出対象染色体からのDNA断片の数量が総DNAを占める割合を示し、aとbは常数であって、且つaは正数である。前記第1、9、10、11、15、16、17、19、20、21、22番の染色体からのDNA断片のGC含有量と各染色体からのDNA断片が総DNA断片を占める割合との間の線形関係が請求項15に記載の通りである請求項28に記載の方法。DNAの配列長さが100bp~250bp間のいずれかの一点又はいずれかの一つの区間の全てのDNAのシークエンシングと比較結果のみを選択し、同一のサンプル中の100bp~250bp間のいずれかの一点又はいずれかの一つの区間の全てのDNA中の検出対象染色体からのDNA断片の数量が100bp~250bp間のいずれかの一点又はいずれかの一つの区間の全てのDNA断片の総数を占める割合を計算し、100bp~250bp間のいずれかの一点又はいずれかの一つの区間の全てのDNA中の前記検出対象染色体からのDNA断片のGC含有量に基づいて前記割合を補正し、また、検出対象サンプルにおける前記検出対象染色体からのDNA断片の補正後の割合の変異を計算し、前記変異レベルに基づいて検出対象染色体のコピー数を確定する請求項25乃至29の中のいずれかに記載の方法。前記DNAライブラリに対するシークエンシングが、双端短配列シークエンシング、単端長配列シークエンシング又は単端短配列シークエンシングである請求項25乃至29の中のいずれかに記載の方法。前記100~250bp間のいずれかの一点又はいずれかの一つの区間のDNAが150bp~170bpのDNAである請求項30に記載の方法。前記100~250bp間のいずれかの一点又はいずれかの一つの区間のDNAが167bpのDNAである請求項32に記載の方法。ここで、衝突しない限り、本願の実施例及び実施例に記載の特徴を組み合わせることができる。以下、図面を参照しつつ実施例を結合して本発明を説明する。本発明における図及び実施例は本発明を解釈するためのもので、本発明を限定するのではない。用語解釈双端短配列は、5’末端接続プライマー直後の50bp未満の配列と、3’末端接続プライマー直後の50bp未満の配列を指す。双端短配列が、5’末端接続プライマー直後の36bp以下の配列と、3’末端接続プライマー直後の36bp以下の配列を指すことが好ましい。単端短配列は、5’末端接続プライマー直後の50bp未満の配列又は3’末端接続プライマー直後の50bp未満の配列を指す。単端短配列が、5’末端接続プライマー直後の36bp以下の配列又は3’末端接続プライマー直後の36bp以下の配列を指すことが好ましい。単端長配列は、5’末端接続プライマー直後の99bpを超える配列又は3’末端接続プライマー直後の99bpを超える配列を指す。双端シークエンシングは、配列両端に位置する配列をそれぞれテストすることを指す。単端シークエンシングは、配列の一端に位置する配列をテストすることを指す。DNA群は、単一のDNA分子を増幅してなる一定の固体面積に位置する複数のDNA分子のことを言う。本願の実施例において、DNA群は、単一のDNA分子を増幅してなる1平方ミクロン内に位置する約1000個のDNA分子を指す。乳化PCRのは、PCR鋳型DNA、PCRプライマー、PCRポリメラーゼ、自由塩基を含むPCRPolymeraseChainReactionの反応物を一つのオイルドロップ内でPCR反応を行うことを指す。通常、一つのオイルドロップ内で、PCRの乳状化を行う鋳型は一つのDNA分子だけである。GC含有量は、核酸又はデオキシリボ核酸において、グアニンとシトシンの数量が塩基総量で占める比例を指す。実施例1:胎芽染色体コピー数の検出方法工程1:母体血液を採取して血漿を調製する。本実施例において、合計で14個の母体血液サンプルを取得し、サンプルの番号は、G356、G397、G426、G735、G756、G760、G763、G770、G778、G779、G780、G781、G824、G825であって、いずれも中南大学湘雅医学院の▲ウ▼玲仟教授が羊水穿刺によって染色体核型鑑定を経て正常の女性の胎芽サンプル46,XXであると鑑定されたものである。上記サンプルを検出したデータは標準曲線の作成に用いられ、また、上記サンプルは標準サンプルになる。血液サンプルを高速遠心処理して血細胞が除去された血漿サンプルを取得し、各サンプルの血漿量は約1mlである。工程2:血漿DNAを抽出する。Qiagen会社が生産したDNA抽出試薬カートリッジを用いて血漿中のDNA製品番号57704を抽出することができる。工程3:血漿DNAをシークエンシング用のライブラリに作成する。血漿DNAを双端短配列シークエンシング、単端長配列シークエンシング又は単端短配列シークエンシング用のライブラリに作成することができ、以下は双端短配列シークエンシング用のライブラリに作成する工程である。抽出したDNA末端を充満して5’端のリン酸化を行って、DNA30μl、純水45μl、10mMATPを有するT4DNAリガーゼ緩衝液10μl、10mMdNTPMix4μl、T4DNAポリメラーゼ5μl、Klenow酵素1μl、T4PNK5μl混合した後、20°Cで、30分の温浴を行う試薬は、Illuminaサンプル準備試薬カートリッジPE~102~1001が提供。温浴後にQIAGENQIAquickPCR浄化試薬カートリッジpart28104を用いてDNAを浄化した。末端懸A:前工程で得られた製品を32μlの緩衝液に溶解し、Klenow緩衝液5μl、1mMdATP10μl、KlenowExo~3μlを添加し、在37°Cで30分保持し試薬は、Illuminaサンプル準備試薬カートリッジPE~102~1001が提供、製品はQIAGENMinElutePCR浄化試薬カートリッジpart28004接続:DNAを10μlの緩衝液に溶解し、DNAリガーゼ緩衝液2X25μl、PEAdapterOligeMix10μl,DNAリガーゼ5μlを添加し、20°Cで15分保持する試薬は、Illuminaサンプル準備試薬カートリッジPE~102~1001が提供。温浴後にQIAGENQIAquickPCR浄化試薬カートリッジpart28104を用いてDNAを浄化する。図1は、サンプルのDNAが両端シークエンシング用のライブラリに作成されたもので、当該ライブラリ中のDNAは1のアガロースゲルで電気泳動を行い、図1はアガロースゲル電気泳動の画像で、最も明確なストリップは280bp前後にある。120bpの接続プライマーを含むので、母体血漿DNAの主な断片は160bp前後に集中されている。両端シークエンシング用のライブラリに対してPCR増幅を行うことが好ましい。つまり、1μlのDNA、22μlの純水、1μlのPEPCRプライマーPE20、1μlのPEPCRプライマーPE10、2xPhusionDNAポリメラーゼFinnzymesOy試薬はIlluminaサンプル準備試薬カートリッジPE~102~1001が提供。PCR機器でDNA増幅を行って、その工程は、98°Cで30秒、98°Cで40秒、65°Cで30秒、72°Cで30秒で、合計12個の循環を行って、72°Cで5分行った。工程4:前記DNAシークエンシング用のライブラリに対しシークエンシングを行う。工程3で製造されたライブラリの違いに基づいて、それぞれ双端短配列シークエンシング、単端長配列シークエンシング又は単端短配列シークエンシングを行うことができる。以下は、双端短配列シークエンシングを行う工程である。IlluminaのcBot機器を用いてDNA双端シークエンシングライブラリ中の単一のDNA分子でDNA群を構成し、当該工程を、乳化PCRによって単一のDNA分子をビーズ上の多分子に変更させることで完成することもできる。上述のように得られたDNA群又は乳化PCRによって得られたDNA玉をIlluminaのGenomeAnalyzer又はHiSeq2000シークエンシング器で双端シークエンシングを行う。当該工程は機器自体で完成する。また、上述のDNA群又は乳化PCRによって得られたDNA玉をIlluminaのGenomeAnalyzer、HiSeq2000又はLifeTechnologies会社のSOLiDシークエンシング器で単端長配列のシークエンシングを行うこともできる。IlluminaのGenomeAnalyzer、HiSeq2000とLifeTechnologies会社のSOLiDシークエンシング器でのシークエンシング工程及び反応条件は、上述のと同じである。工程5:血漿中のDNA断片が何番の染色体からのものであるかを確定し、また、検出対象染色体のコピー数が正常であるか否かを確定する。DNAライブラリの双端短配列シークエンシングを行って後また、単端長配列又は単端短配列のシークエンシングを行うこともできる、一つのDNA断片両端の各36bpの塩基配列を把握した後、当該両端の配列と人類ゲノム標準配列371Http:www.ncbi.nlm.nih.govprojectsgenomeassemblygrchumandatabuild=37当該データベースはHG19とも呼ばれると比較し、当該両端の配列各々の染色体上の位置を確定した。当該両端配列間の距離が当該DNA断片の長さであって、同時に、当該両端配列が位置する染色体の位置によって当該DNA断片が何番の染色体からのものであるかを確定できる。図2は、上記の方法で確定して得たサンプルG356のDNA断片サイズの分布図で、図2に示すように、母体血漿の短DNAは主に100bp~220bpの間に集中されている。図3は、比較後のサンプルG356中のX染色体からのものであると確定されたDNA断片を断片サイズに基づいて行った分布図である。得られた図形は図2と大体一致する。工程6:同一のサンプル中の前記DNA中の検出対象染色体からのDNA断片数量がDNA断片を占める割合を計算し、前記検出対象染色体からのDNA断片のGC含有量に基づいて、前記割合を補正し、また、検出対象サンプルにおける前記検出対象染色体からのDNA断片の補正後の割合の変異を計算し、前記変異レベルに基づいて検出対象染色体のコピー数を確定する。DNAの配列の長さが100bp~250bp間であるいずれかの一点又はいずれかの一つの区間の全てのDNAのシークエンシングと比較結果を選択し、同一のサンプル中の100bp~250bp間のいずれかの一点又はいずれかの一つの区間の全てのDNA中の検出対象染色体からのDNA断片の数量が、100bp~250bp間のいずれかの一点又はいずれかの一つの区間の全てのDNA断片を占める割合を計算し、前記検出対象染色体からのDNA断片のGC含有量に基づいて、前記割合を補正し、また、検出対象サンプルにおける前記検出対象染色体からのDNA断片の補正後の割合の変異を計算し、前記変異レベルに基づいて検出対象染色体のコピー数を確定することが好ましい。実験において、DNAの配列の長さが100bp~250bp間にあるいずれかの一点又はいずれかの一つの区間の全てのDNAのシークエンシングと比較結果を選択する、実験結果の正確度を向上できることが分かった。具体的な計算方法は以下の通りである:標準サンプルを用いて、同一のサンプル中の検出対象染色体からのDNA断片が全てのDNA断片を占める割合を計算し、シークエンシングの結果に基づいて、検出対象染色体からのDNA断片のGC含有量を把握できる。また、上記割合とGC含有量に基づいて、GC含有量Y軸と各染色体又は一部の染色体が全染色体で占める百分比X軸の標準曲線を作成することができる。検出対象サンプルを検出して得た染色体の割合を当該染色体特有の関数に従ってある固定のGC値に補正し、通常、GC値の算術平均を用いる。また、検出対象サンプル中の前記検出対象染色体からのDNA断片を補正した後の割合の変異Z値を計算し、Z値に基づいて検出対象染色体のコピー数を確定する。図5A~Hは、検出したサンプル中の検出対象染色体からのDNA断片のGC含有量と検出対象染色体からのDNA断片が総DNA断片を占める割合に基づいて作成した標準曲線である。図に示すように、第2、3、4、5、6、7、8、12、13、14、18、X番染色体からのDNA断片のGC含有量はそれぞれ、各染色体からのDNA断片が総DNA断片を占める割合と反比例し、前記線形関係をy=axbで表することができ、ここで、yは検出対象染色体からのDNA断片のGC含有量を示し、xは検出対象染色体からのDNA断片の数量が総DNAを占める割合を示し、aとbは常数で、且つaは負数である。ここで、異なる参照サンプルの場合、式中の具体的なパラメーターが若干の変化があるが、総傾向は変化しない。表1に第2、3、4、5、6、7、8、12、13、14、18、X番染色体の関数を示した。第1、9、10、11、15、16、17、19、20、21、22番の染色体からのDNA断片のGC含有量はそれぞれ、各染色体からのDNA断片が総DNA断片を占める割合に正比例し、前記線形関係はy=axbで表することができ、ここで、yは検出対象染色体からのDNA断片のGC含有量を示し、xは検出対象染色体からのDNA断片の数量が総DNAを占める割合を示し、aとbは常数で、且つaは正数である。そして、検出対象サンプルを検出して得た染色体の割合を、当該染色体特有の関数に従って、ある固定のGC値に補正し、通常、GC値の算術平均を用いる。例えば、各染色体からのDNA断片のGC含有量と各染色体からのDNA断片が総DNA断片を占める割合を示すy=axbの関数から分かるように、各サンプル中の各染色体からのDNA断片が総DNA断片を占める割合xを、当該関数によってGC値で補正することができる。補正式は、である。ここで、は検出したサンプルが当該所定の染色体断片が総DNA断片を占める割合を示し、yは検出対象サンプルの所定の染色体断片上のGC含有量を示し、は検出した標準サンプル既に正常のサンプルであることを把握、例えば、実施例1において検出した既に正常であることを把握した14個の標準サンプルの当該断片の染色体における算術平均GC値を示し、aは当該曲線の傾斜度を示す。各染色体の関数は表1と表2に示す通りで、異なるサンプルのy、yの値は今回試験の検出値であって、当該2つのパラメーターは検出対象サンプルが異なると相違する。このような補正済みのx値の平均値と標準誤差を計算することによって、数値Zが得られ、Z=検出対象サンプルの補正済みの割合x補正済みの各標準サンプル割合の平均値標準誤差である。各検出対象サンプルの前記補正済みの割合xの変異を計算し、前記変異の数値Zに基づいて、検出対象染色体又は検出対象一部の染色体のコピー数を確定する。通常、Zの絶対値が3未満であると正常の検出誤差とし、Zの絶対値が3を超えると異常と判定する。以下の表3、4、5は、実施例1の方法で、サンプルG356、G397重複して8回検出した、G426、G735、G756、G760、G763、G770、G778、G779、G780、G781、G824、G825を検出して計算した第13、18、21番の染色体の検出及び補正結果である。ここで、上記検出と計算の方法は染色体全体のコピー数の異常の検出に適すると共に、一部の染色体のコピー数の異常の検出にも適する。以下は、検出対象サンプル中の胎芽13番の染色体のコピー数を検出する実施例である。上述のように、合計で15個の母体血液サンプルを採取し、血液サンプルは高速遠心処理を経て血細胞が除去された血漿サンプルであって、各サンプルの血漿量は約1mlで、サンプルの番号はG352、G362、G372、G383、G397重複して8回検出した、G402、G409、G415、G424、G445、G440、G503、G588、G735、G783である。上記サンプルはいずれも中南大学湘雅医学院の▲ウ▼玲仟教授によって収集したものである。存在する可能性のある13番染色体3倍体を検出する。上述のように得られた13番の染色体の標準曲線を用いて、上述の検出の結果を検証する。図6に示すように、GC補正を行っていない場合図においてX軸上の菱形で標記、13番染色体3倍体のサンプルG445、G352、G402X軸上三つの円形で標記したサンプルと正常のサンプルX軸上で標記していないサンプルとを区別することができない。しかし、GC補正を行った場合図において矩形で示す、13番染色体3倍体のサンプルG445、G352、G402図において三つの矢印で標記したサンプルと正常のサンプル図において他の矩形で示すサンプルとを明確に区別することができ、また、GC補正を行った結果は中南大学湘雅医学院の▲ウ▼玲仟教授が羊水穿刺して染色体核型鑑定した結果と一致する。従って、GC含有量の補正は、13番の染色体3倍体の検出に用いられ、仮陰性結果の出現を低減できる。以下の表6に一部の検出対象サンプルの検出と計算結果のみを示す、他のサンプルの結果は示していない。表に示すように、G445、G352、G402サンプルのZ値が3を超えると、13番の染色体3倍体と確定することができる。他の各サンプルのZ値はいずれも-3~3の間である。以下は、検出対象サンプル中の胎芽18番染色体のコピー数を検出する実施例である。上述のように、合計16個の母体血液サンプルを採取し、血液サンプルは高速遠心処理を経て血細胞が除去された血漿サンプルで、各サンプルの血漿量は約1mlで、サンプルの番号はG362、G372、G383、G397重複して8回検出した、G407、G409、G415、G424、G442、G432、G445、G440、G595、G588、G735、G783である。上記サンプルはいずれも中南大学湘雅医学院の▲ウ▼玲仟教授が収集したものである。存在する可能性のある18番の染色体3倍体を検出する。図7に示すように、上述のように得られた18番の染色体の標準曲線を用いて、前記検出の結果を検証する。GC補正を行っていない場合図においてX軸上の菱形で示す、一部の18番染色体3倍体のサンプルX軸上の黒の円形で標記したサンプルと正常のサンプルX軸上で菱形で示すが標記していないサンプルとを区別することができないので、当該サンプルの仮陰性をもたらした。他の18番染色体3倍体のサンプル図において下向き矢印で標記したX軸上のサンプルはGC含有量の補正を行わずに検出することができる。しかし、GC補正を行った場合図において矩形で標記、全ての18番染色体3倍体のサンプル図において横向き矢印で標記したサンプルと正常のサンプル図において他の矩形で示すサンプルとを明確に区別することができ、また、GC補正を行った結果は中南大学湘雅医学院の▲ウ▼玲仟教授が羊水穿刺して染色体核型鑑定した結果と一致する。従って、GC含有量の補正は、18番染色体3倍体の検出に用いられ、仮陰性結果の出現を低減できる。以下の表7に一部の検出対象サンプルの検出と計算結果のみを示し、他のサンプルの結果は示していない。表に示すように、G424、G442、G432、G415、G595、G407サンプルのZ値が3を超えると、18番染色体3倍体であると確定することができる。他の各サンプルのZ値はいずれも-3~3間である。以下は、検出対象サンプル中の胎芽21番染色体のコピー数を検出する実施例である。上述のように、合計で14個の母体血液サンプルを採取し、血液サンプルは高速遠心処理を経て血細胞が除去された血漿サンプルであって、各サンプルの血漿量は約1mlで、サンプルの番号はG267、G387、G393、G376、G397重複して8回検出した、G405、G408、G409、G440、G491、G588、G641、G735、G783である。上記サンプルはいずれも中南大学湘雅医学院の▲ウ▼玲仟教授が収集したものである。21番染色体3倍体が存在する可能性のあるダウン症候群のサンプルを検出する。図9Aに示すように、上述のように得られた21番染色体の標準曲線を用いて、前記検出の結果を検証する。GC補正を行っていない場合図においてX軸上の菱形で示す、21番染色体3倍体のサンプルを、総染色体を占める百分比のみに基づいて検出することができるX軸上の黒の円形と三つの縦方向矢印で標記するサンプル。その中の一つのサンプルX軸上の黒の円形で標記したサンプルと正常のサンプル他の菱形で標記したサンプルとの区別が明確でなく、当該サンプルの仮陰性が検出される恐れがある。しかし、GC補正を行った場合図において矩形で標記、全ての21番染色体3倍体のサンプル図において四つの横方向の矢印で標記したサンプルと正常のサンプル図において他の矩形で標記するサンプルとを明確に区別でき、また、GC補正を行った結果は中南大学湘雅医学院の▲ウ▼玲仟教授が羊水穿刺して染色体核型鑑定した結果に一致する。GC含有量の補正の、21番染色体3倍体の検出精度の向上に対する影響を、21番染色体3倍体のサンプルと正常のサンプルとの最小距離に基づいて判断することができる。図9Bに示すように、補正後の最小距離d1は補正前の最小距離d2より大きい。従って、GC含有量の補正によると、21番染色体3倍体をさらに正確に検出し、仮陰性結果の出現を低減することができる。以下の表8には一部の検出対象サンプルの検出と計算結果のみを示し、他のサンプルの結果は示していない。表に示すように、G405、G387、G376、G393サンプルのZ値が3を超えると、21番染色体3倍体であると確定できる。他の各サンプルのZ値はいずれも:-3~3の間である。実施例2:胎芽又は腫瘍染色体のコピー数を検出する試薬カートリッジ実施例1の検出方法に対応し、本願の発明者は胎芽又は腫瘍染色体のコピー数を検出できる試薬カートリッジを開発した。当該試薬カートリッジは、血液の採取に用いることのできる全ての採血針、注射器等であることができる、母体又は腫瘍患者から採血する器具と、遠心分離機に適して血液を収容するための微小管又は他の分離に適する全ての容器又は器具であることができる、前記血液中の血細胞と血漿との分離に適する器具と、プロテアーゼ、飽和フェノール、クロロホルム:イソペンチルアルコール24:1、酢酸ナトリウム、無水アルコール、70アルコール、TE溶液等を含むことができる前記血漿中のDNAを抽出する試薬及び器具と、ここで、Qiagen会社が生産したDNA抽出試薬カートリッジを用いて血漿中のDNA製品番号57704を抽出することができ、また他のDNAの抽出に適する試薬又は容器を選択することができ、前記DNAを、双端短配列シークエンシングのライブラリ、単端長配列シークエンシングのライブラリ又は単端短配列シークエンシングのライブラリであることのできるシークエンシング用のライブラリに作成する試薬及び器具と、ここで、前記DNAを双端短配列シークエンシング用のライブラリに作成する試薬及び器具は、10mMATPを有するT4DNAリガーゼ緩衝液と、10mMdNTPMixと、T4DNAポリメラーゼと、Klenow酵素と、T4PNK以上の試薬はIlluminaサンプル準備試薬カートリッジPE―102―1001が提供と、特定の環境でDNAと親和性を有するイオン交換樹脂と、を含み、DNAを分離させる。また、QIAGENQIAquickPCR製品である分離試薬カートリッジ製品番号28104又はQIAGENMinElutePCR製品である分離試薬カートリッジ製品番号28004を選択することもでき、前記DNAに対して、双端短配列シークエンシング、単端長配列シークエンシング又は単端短配列シークエンシングであることのできるシークエンシングを行う試薬及び器具と、を含み、ここで、双端短配列シークエンシングを行う試薬及び器具は、PEPCRプライマーPE20と、PEPCRプライマーPE10と、PhusionDNAポリメラーゼFinnzymesOyと、を含む試薬はIlluminaサンプル準備試薬カートリッジPE―102―1001が提供。実施例3:他の胎芽又は腫瘍染色体のコピー数を検出する試薬カートリッジ本願の発明者は、他の胎芽又は腫瘍染色体のコピー数を検出できる試薬カートリッジを開発し、それは、血液の採取に用いることのできる全ての採血針、注射器等であることができる、母体又は腫瘍患者から採血する器具と、遠心分離機に適して血液を収容するための微小管又は他の分離に適する全ての容器又は器具であることができる、前記血液中の血細胞と血漿との分離に適する器具と、プロテアーゼ、飽和フェノール、クロロホルム:イソペンチルアルコール24:1、酢酸ナトリウム、無水アルコール、70アルコール、TE溶液等を含むことができる前記血漿中のDNAを抽出する試薬及び器具と、ここで、Qiagen会社が生産したDNA抽出試薬カートリッジを用いて血漿中のDNA製品番号57704を抽出することができ、また他のDNAの抽出に適する試薬又は容器を選択することができ、アガロース粉Biowest11860、markermarkerTakara100bpDNAmarker、製品番号D505A等を含むことができる、物理方法で前記DNAの断片をそのサイズに応じて分離する試薬及び器具と、例えば、一定の区間のアガロースゲルを取るカッターを含むことができる、100bp~250bp間のいずれかの一点又はいずれかの一つの区間の全てのDNAを選択してシークエンシングを行う試薬及び器具と、を含む。切り取ったアガロースゲルからDNAを回収して増幅を行ってシークエンシング用のライブラリに作成する試薬及び器具を含むことが好ましい。実施例4:胎芽又は腫瘍染色体のコピー数を検出する装置胎芽又は腫瘍染色体のコピー数を検出する装置は、母体の血漿サンプル又は腫瘍患者の血漿サンプル中のDNAに対してシークエンシングを行う検出モジュールと、ここで、前記シークエンシングは母体の血漿サンプル又は腫瘍患者の血漿サンプル中のDNAをシークエンシング用のライブラリに作成する工程であり;母体血漿のサンプル中のDNAに対するシークエンシングに、IlluminaのcBot機器とIlluminaのGenomeAnalyzer又はHiSeq2000シークエンシング器又はABI会社のSOLiDシリーズのシークエンシング器を用いることができ、前記DNAのシークエンシング結果と染色体組配列図譜とを比較して前記DNA中の各DNA断片が何番の染色体からのものであるか、及び前記各DNA断片の配列長さを確定する比較モジュールと、ここで、人類ゲノム標準配列データベースhg19を利用することができ、同一のサンプル中の検出対象染色体からのDNA断片の数量が全てのDNA断片を占める割合を計算し、前記検出対象染色体からのDNA断片のGC含有量に基づいて前記割合を補正し、また、検出対象サンプルにおける前記検出対象染色体からのDNA断片の補正後の割合の変異を計算し、前記変異レベルに基づいて検出対象染色体のコピー数を確定する計算モジュールと、前記検出対象染色体のコピー数を出力する出力モジュールと、を含む。また、検出モジュールは、サンプル中の全てのDNA断片を検出することができれば、100bp~250bp間のいずれかの一点又はいずれかの一つの区間、例えば150bp~175bpの全てのDNAのみを検出することもでき、検出装置の上流に、前記DNAの断片のサイズに応じて母体血漿中のDNAを分離する試薬及び器具、例えばアガロースゲル電気泳動のモジュール又は装置を設けることによって実現することができる。当業者にとって、上述の本発明の各ブロック又は各ステップは共通の計算装置によって実現することができ、単独の計算装置に集中させることができれば、複数の計算装置から構成されるネットワークに分布させることもでき、さらに計算装置が実行可能なプログラムのコードによって実現することもできるので、それらを記憶装置に記憶させて計算装置によって実行することができ、又は夫々集積回路ブロックに製作し、又はそれらにおける複数のブロック又はステップを単独の集積回路ブロックに製作して実現することができることは明らかなことである。このように、本発明は如何なる特定のハードウェアとソフトウェアの結合にも限定されない。以上は、本発明の好適な実施例に過ぎず、本発明を限定するものではない。当業者であれば本発明に様々な修正や変形が可能である。本発明の精神や原則内での如何なる修正、置換、改良などは本発明の保護範囲内に含まれる。参照文献:1CunninghamFetalInWilliamsObstretricsp9422WapnerRetalFirsttrimesterscreeningfortrisomies21and18NEnglJMed349140514133LoYMetalPresenceoffetalDANinmaternalplasmaandserumLancet3504854874LoYMetalPlasmaplacentalRNAallelicratiopermitsnoninvasiveprenatalchromosomalaneuploidydetectionNatMed132182235TongYKetalNoninvasiveprenataldetectionoffetaltrisomy18byepigeneticallelicratioanalysisinmaternalplasmaTheoreticalandempiricalconsiderationsClinChem52219422026FanHCQuakeSRDetectionofaneuploidywithdigitalpolymerasechainreactionAnalChem79757675797LoYMetalDigitalPCRformoleculardetectionoffetalchromosomalaneuploidyProcNatlAcadSciUSA10413116131218BentleyDRetalAccuratewholehumangenomesequencingusingreversibleterminatorchemistryNature45653599McKernanKJetalSequenceandstructurevariationinahumangenomeuncoveredbyshortreadmassivelyparallelligationsequencingusingtwobaseencodingGenomeResearch1191527154110HarrisTDetalSinglemoleculeDNAsequencingofaviralgenomeScience32010610911FanHCetalNoninvasivediagnosisoffetalaneuploidybysequencingDNAfrommaternalbloodProcNatlAcadSciUSA105162661627112ChiuRWKetalNoninvasiveprenataldiagnosisoffetalchromosomalaneuploidybymassivelyparallelgenomicsequencingofDNAinmaternalplasmaProcNatlAcadSciUSA105204582046313ChiuRWKetalMaternalplasmaDNAanalysiswithmassivelyparallelsequencingbyligationfornoninvasiveprenataldiagnosisoftrisomy21ChinChem5645946314LewisDEetalAntigenicapproachtothedetectionandisolationofmicroparticlesassociatedfetalDNAPCTUS201002520915FanHCetalAnalysisofthesizedistributionsoffetalandmaternalcellfreeDNAbypairedendsequencingClinChem5612791286"