以下の工程を含む、被験者の扁平上皮癌組織の放射線感受性を検査するための方法:当該被験者の扁平上皮癌組織から取得した生体試料におけるBAG1遺伝子の発現量Ecancerを測定する工程;及び、当該発現量Ecancerを被験者の扁平上皮癌組織の放射線感受性と関連付ける工程;ここで、当該発現量Ecancerが基準Sと比較して増加している場合に当該被験者の扁平上皮癌組織の放射線感受性は増加していると判断される。配列番号:1に記載された核酸配列又はその相補配列の少なくとも15個の連続するヌクレオチド配列を含むポリヌクレオチドからなる、扁平上皮癌組織の放射線感受性を検査するためのプライマー。配列番号:1に記載された核酸配列又はその相補配列と少なくとも80の同一性を有するヌクレオチド配列を含むポリヌクレオチドからなる、扁平上皮癌組織の放射線感受性を検査するためのハイブリダイゼーションプローブ。配列番号:2に記載されたアミノ酸配列を含むポリペプチドを認識する抗体を含有する、扁平上皮癌組織の放射線感受性を検査するための試薬。配列番号:1に記載された核酸配列又はその相補配列の少なくとも15個の連続するヌクレオチド配列を含む1又は複数のポリヌクレオチド、及び、被験者の扁平上皮癌組織から取得した生体試料におけるBAG1遺伝子の発現量が基準と比較して増加している場合に当該被験者の扁平上皮癌組織の放射線感受性は増加していることを教示する使用説明書を含む、扁平上皮癌組織の放射線感受性を検査するためのキット。配列番号:1に記載された核酸配列又はその相補配列と少なくとも80の同一性を有するヌクレオチド配列を含む1又は複数のポリヌクレオチド、及び、被験者の扁平上皮癌組織から取得した生体試料におけるBAG1遺伝子の発現量が基準と比較して増加している場合に当該被験者の扁平上皮癌組織の放射線感受性は増加していることを教示する使用説明書を含む、扁平上皮癌組織の放射線感受性を検査するためのキット。配列番号:2に記載されたアミノ酸配列を含むポリペプチドを認識する1又は複数の抗体、及び、被験者の扁平上皮癌組織から取得した生体試料におけるBAG1遺伝子の発現量が基準と比較して増加している場合に当該被験者の扁平上皮癌組織の放射線感受性は増加していることを教示する使用説明書を含む、扁平上皮癌組織の放射線感受性を検査するためのキット。一般的に、扁平上皮癌は他の癌と比較して放射線感受性が高く、第一に選択すべき処置として、放射線化学療法が選択されることが多い。しかし、同じ扁平上皮癌の患者であっても、患者ごとに腫瘍の放射線感受性には大きなばらつきがあり、治療方針の決定を助ける信頼性の高い扁平上皮癌細胞の放射線感受性のマーカーの同定が強く望まれてきた。即ち、本件発明が解決しようとする課題は、新規の信頼性の高い扁平上皮癌細胞の放射線感受性のマーカーを提供することである。本発明者らは、網羅的解析により、扁平上皮癌細胞の放射線感受性を高めるマーカーとして新たにBAG1を同定した。驚くべきことに、この結果は、腺癌についての非特許文献4、非特許文献5、及び非特許文献6の結果と全く逆である。一般的に、腺癌の放射線感受性は扁平上皮癌よりも低いことが知られておりAPilottoetalSKargerPublishers2003p8991、BAG1発現の放射線感受性への影響も両者で異なることが分かった。本発明は、以下の検査方法、試薬、及びキットを提供する。1以下の工程を含む、被験者の扁平上皮癌組織の放射線感受性を検査するための方法:当該被験者の扁平上皮癌組織から取得した生体試料におけるBAG1遺伝子の発現量Ecancerを測定する工程;及び、当該発現量Ecancerを被験者の扁平上皮癌組織の放射線感受性と関連付ける工程;ここで、当該発現量Ecancerが基準Sと比較して増加している場合に当該被験者の扁平上皮癌組織の放射線感受性は増加していると判断される。2配列番号:1に記載された核酸配列又はその相補配列の少なくとも15個の連続するヌクレオチド配列を含むポリヌクレオチドからなる、扁平上皮癌組織の放射線感受性を検査するためのプライマー。3配列番号:1に記載された核酸配列又はその相補配列と少なくとも80の同一性を有するヌクレオチド配列を含むポリヌクレオチドからなる、扁平上皮癌組織の放射線感受性を検査するためのハイブリダイゼーションプローブ。4配列番号:2に記載されたアミノ酸配列を含むポリペプチドを認識する抗体を含有する、扁平上皮癌組織の放射線感受性を検査するための試薬。5配列番号:1に記載された核酸配列又はその相補配列の少なくとも15個の連続するヌクレオチド配列を含む1又は複数のポリヌクレオチド、及び、被験者の扁平上皮癌組織から取得した生体試料におけるBAG1遺伝子の発現量が基準と比較して増加している場合に当該被験者の扁平上皮癌組織の放射線感受性は増加していることを教示する使用説明書を含む、扁平上皮癌組織の放射線感受性を検査するためのキット。6配列番号:1に記載された核酸配列又はその相補配列と少なくとも80の同一性を有するヌクレオチド配列を含む1又は複数のポリヌクレオチド、及び、被験者の扁平上皮癌組織から取得した生体試料におけるBAG1遺伝子の発現量が基準と比較して増加している場合に当該被験者の扁平上皮癌組織の放射線感受性は増加していることを教示する使用説明書を含む、扁平上皮癌組織の放射線感受性を検査するためのキット。7配列番号:2に記載されたアミノ酸配列を含むポリペプチドを認識する1又は複数の抗体、及び、被験者の扁平上皮癌組織から取得した生体試料におけるBAG1遺伝子の発現量が基準と比較して増加している場合に当該被験者の扁平上皮癌組織の放射線感受性は増加していることを教示する使用説明書を含む、扁平上皮癌組織の放射線感受性を検査するためのキット。配列番号:1に記載された核酸配列は、GenBankにgi288915524refNM0043235HomosapiensBCL2associatedathanogenetranscriptvariant1mRNAとして登録されている配列と同一である。また、配列番号:2に記載されたアミノ酸配列は、GenBankにgi288915525refNP0043145BAGfamilymolecularchaperoneregulator1isoformBAG1LHomosapiensとして登録されている配列と同一である。本件発明の検査方法、試薬、又はキットを使用することにより、個々の患者が放射線化学療法を選択すべきか否かの判断が容易になり、患者のQOLの向上を図ることができる。被験者:本願明細書で被験者というときは、哺乳類、特にヒトを意味する。扁平上皮癌:扁平上皮癌という用語は、腺癌及び非上皮性癌に対する概念として用いる。本願発明の方法、試薬、及びキットは、口腔、咽頭、喉頭、肺及び食道の扁平上皮癌に好適に用いることができ、特に食道扁平上皮癌に好適に用いることができる。組織:本願明細書で組織というときは、癌細胞を含む組織を意味する。ただし、本願発明に関して組織というときは、乳癌、脳癌、神経膠芽腫、結腸直腸癌、及びヒトパピローマウイルスの感染によりp53が抑制されている癌由来の癌細胞を含む組織は意味しない。放射線感受性:本願明細書で放射線感受性が高い又は増加しているというときは、同一線量の放射線照射によって、より大きい割合の癌細胞が死ぬことを意味する。反対に、放射線感受性が低い又は減少しているというときは、同一線量の放射線照射によって、より小さい割合の癌細胞が死ぬことを意味する。なお、ある遺伝子を発現している癌細胞が放射線治療で死にやすいことは、当該遺伝子を癌組織で発現している患者で放射線治療が効果があること又は放射線治療後の予後が良いことに貢献するが、ある遺伝子を癌組織で発現している患者で放射線治療が効果がある又は放射線治療後の予後が良いからといって、当該遺伝子を発現している癌細胞が放射線治療で死にやすいとは限らない。ある遺伝子を癌組織で発現していることそれ自体が良好な予後に貢献している可能性もあるからである。生体試料:本願明細書で生体試料というときは、生きている被験者から隔離されたインビトロの試料を意味する。発現量:本願明細書で発現量というときは、着目する遺伝子の発現量を意味し、具体的には、当該遺伝子からのmRNA又はタンパク質の発現量を意味する。発現量の絶対値、即ちmRNA又はタンパク質の分子数、を測定することは通常困難であるので、本願明細書で発現量というときは発現量の相対値を意味する。発現レベルという用語は発現量と同義で用いる。測定:本願明細書で測定というときは、定量的な測定のみならず定性的な検出も含む。mRNAの発現量を測定するための手段としては、ノーザンブロット法、RTPCR法、マイクロアレイ法、などを好適に用いることができる。タンパク質の発現量を測定するための手段としては、ウェスタンブロット法、免疫組織化学染色法、などを好適に用いることができる。基準:本願明細書で発現量に関して基準というときは、発現量を表す換算又は計算された数値、あるいは、発現量を示す色素の濃度、蛍光の強度などを意味する。mRNAの発現量の基準としては、BAG1mRNAの発現量を測定した生体試料のハウスキーピング遺伝子のmRNAの発現量の値と適当な数値との積を好適に用いることができる。例えば、BAG1mRNAの発現量がβactinmRNAの発現量と比較して、00020倍、00025倍、好ましくは、00030倍、00035倍、00040倍、00045倍、更に好ましくは、00050倍、00055倍、00060倍、00065倍、00070倍、00075倍、最も好ましくは、00080倍、00085倍、00090倍、00095倍、又は、00100倍、よりも多い場合にBAG1遺伝子の発現量が基準と比較して増加しているということができる。タンパク質の発現量の基準としては、例えば、BAG1抗体を用いて免疫組織化学染色法を行った生体試料における、BAG1タンパク質を発現する細胞の割合を好適に用いることができる。例えば、測定領域の、5、10、15、好ましくは、20、25、30、35、更に好ましくは、40、45、50、55、最も好ましくは、60、65、70、75、80、85、90、又は95、よりも多く、あるいは、100の細胞がBAG1タンパク質を発現している場合にBAG1遺伝子の発現量が基準と比較して増加しているということができる。ポリヌクレオチド:本願発明を実施するために用いられるポリヌクレオチドは、例えば、着目するmRNAの配列又はその相補配列の少なくとも15個の連続するヌクレオチド配列を含むポリヌクレオチドである。本願明細書ではポリヌクレオチドとオリゴヌクレオチドは同義で用いる。連続するヌクレオチドの数としては、例えば、少なくとも、15個、16個、17個、18個、19個、20個、21個、22個、23個、24個、25個、26個、27個、28個、29個、30個、31個、32個、33個、34個、35個、36個、37個、38個、39個、40個、41個、42個、43個、44個、45個、46個、47個、48個、49個、又は50個、が好ましい。また、本願発明を実施するためには、例えば、着目するmRNAの配列又はその相補配列と80以上の同一性を有するヌクレオチド配列を含むポリヌクレオチドを利用することができる。同一性のレベルとしては、例えば、少なくとも、80、81、82、83、84、85、86、87、88、89、90、91、92、93、94、95、96、97、98、又は99、あるいは100、が好ましい。RTPCRに用いる場合には、ポリヌクレオチドの長さは、50ヌクレオチド、45ヌクレオチド、40ヌクレオチド、35ヌクレオチド、30ヌクレオチド、又は25ヌクレオチド、以下が好ましい。一般的に言って、ポリヌクレオチドをPCRプライマーとして用いる場合には、プライマーの5’末端側の変異は鋳型DNAへのハイブリダイゼーションに影響しにくい。従って、例えば、プライマーの3’末端側の15個の連続するヌクレオチド配列が鋳型DNAの標的配列と完全に相補的であれば、プライマーの5’末端側の配列は比較的自由に変更することができる。プライマーの5’末端側に各種酵素の認識配列や分子内ヘアピン構造を形成させる配列を導入することは、当業者が日常的に行っていることである。ハイブリダイゼーションプローブとして用いる場合には、ポリヌクレオチドの長さは、少なくとも、20ヌクレオチド、30ヌクレオチド、50ヌクレオチド、70ヌクレオチド、100ヌクレオチド、150ヌクレオチド、200ヌクレオチド、350ヌクレオチド、500ヌクレオチド、750ヌクレオチド、又は1000ヌクレオチド、が好ましい。一般的に言って、ポリヌクレオチドをハイブリダイゼーションプローブとして用いる場合には、プローブの何れの領域においても変異を導入することができる。好ましい同一性のレベルは上に述べた通りである。抗体:本願発明を実施するために用いられる抗体としては、ポリクローナル抗体、モノクローナル抗体のいずれも好適に用いることができるが、モノクローナル抗体が特に好ましい。試薬:本願発明の抗体を含有する試薬は、抗体そのものでも良いが、Fab断片やF2断片などの当業者に良く知られた断片でも良い。また、抗体はペルオキシダーゼ、アルカリホスファターゼ、ビオチン、金属コロイド、FITCなどの当業者に良く知られたラベルと結合していてもよい。また、抗体を含有する試薬が適当な塩、緩衝剤、保存料、界面活性剤、還元剤、凍結保護物質などを含有しても良いことは言うまでもない。実験材料及び実験方法株化細胞及び培養我々は、食道扁平上皮癌の株化細胞であるTE5、9及び12細胞株を、東北大学加齢医学研究所及び理化学研究所バイオリソースセンター細胞バンクから2006年に入手した。TE12株化細胞は近年汚染が報告されているので、我々は4つのクローナルなTE12株化細胞を樹立し、それぞれ、TE12クローンA1からA4と名づけた。本研究のために、我々はTE5、TE9及びTE12cloneA1細胞を用いた。これらの細胞は、10の熱失活ウシ胎仔血清及び抗生物質を追加したRPMI1640培地中で培養し、5CO295大気雰囲気下、37°Cの加湿恒温器内で維持した。細胞増殖アッセイ細胞増殖はCellCountingKit8同仁化学研究所、熊本、日本を用いて評価した。細胞は96穴プレートに1×103細胞ウェルの密度で蒔き、0、1、2、3又は4日間保温した。適切な時期に10μlのCellCountingKit8試薬を細胞に加えた。細胞は、その後1時間保温し、更にその後、プレートの450nmでの光学密度をModel550MicroplateReaderを用いて読み取った。放射線療法に関する細胞生存率細胞は96穴プレートに1×103細胞ウェルの密度で蒔き、24時間37°Cで保温した。細胞はその後、SOFTEXM100WEを用いて05又は10Gyで照射された。照射条件は、100kV、5mAであり、これは2695Gy分の線量に相当する。更に72時間培養した後、細胞生存率を比色MTSアッセイで評価した。手短に述べると、20μlのMTSを培養液に加え、37°Cで4時間保温した。その後、490nmにおける光学密度をマイクロプレート読み取り装置を用いて測定することにより、細胞生存率を決定した。マイクロアレイ解析TE12cloneA1及びTE5細胞は、CodeLinkTMHumanWholeGenomeBioarrayを用いて解析した。マイクロアレイ解析はフィルジェン株式会社に委託した。手短に述べると、それぞれのバイオアレイについて、10μgのcRNAに5μlの5×断片化バッファーを加え、94°Cで20分間保温した。その後、当該10μgの断片化されたcRNAに、78μlのハイブリダイゼーションバッファーコンポーネントA及び130μlのハイブリダイゼーションバッファーコンポーネントBを加え、最終容積を水で260μlに合わせた。このようにして得られたハイブリダイゼーション反応混合液を90°Cで5分間保温した。その後、250μlをゆっくりとそれぞれのアレイのインプットポートに注入し、ポートをシーリングストリップで封着した。バイオアレイは、その後、300rpmで振盪しながら37°Cで18時間保温した。比較実験のためにハイブリダイゼーションの時間を一定に保った。保温に引き続いて、バイオアレイは075×TNTバッファーで洗浄した。この洗浄は、46°Cで正確に1時間保温することにより行った。スモールリエージントリザーバーのそれぞれのスロットに34mlのCy5ストレプトアビジンワーキングソリューションを満たし、アレイを25°Cでもう30分間保温した。その後、25°Cの1×TNTバッファーを用いてバイオアレイを5分間ずつ4回洗浄し、さらに、01×SSC005Tween20で30秒間ずつ2回リンスし、25°Cで3分間の遠心分離により直ちに乾燥させた。最後に、アレイはGenePix4000BArrayScannerを用いてスキャンし、MicroArrayDataAnalysisToolVer32を用いてデータを解析した。リアルタイム逆転写酵素ポリメラーゼ連鎖反応法それぞれの細胞型から、TRIzol試薬及びPureLinkRNAMiniKitを用いて、製造者の説明書に従って全RNAを単離した。単離したRNAを分光光度計を用いて定量した後、2μg分割量のRNAからTranscriptorFirstStrandcDNASynthesisKitを用いて逆転写した。インスリン様増殖因子結合タンパク質3及びBcl2associatedathanogene1を増幅するためのプライマー配列は表1に示した。リアルタイム逆転写酵素ポリメラーゼ連鎖反応法は、LightCycler480Kitを用いてLightCycler480上で行った。増幅プロトコールは、95°Cで5分間インキュベーションした後、95°Cで10秒間、60°Cで30秒間、及び、50°Cで30秒間を45サイクル繰り返すものであった。IGFBP3及びBAG1のmRNAの発現量は、βactinのmRNAの発現量に対して標準化した。免疫ブロット解析細胞は、10cm皿で24時間培養した後、無血清RPMI1640培養液を加え、更に48時間培養した。その後、上清を回収し、タンパク質の濃度を測定した。20μgのタンパク質を含む試料をドデシル硫酸ナトリウムポリアクリルアミドゲル電気泳動にかけて、分離されたタンパク質をニトロセルロース膜にトランスファーした。その後、これを5脱脂乳及び01Tween20を含むリン酸緩衝食塩水でブロックした。ブロッキングの後、上記膜を初めに抗ヒトIGFBP3抗体又はBAG1抗体と共に一晩4°Cで保温し、それから、ペルオキシダーゼ抱合型二次抗マウスIgGと共に1時間保温した。免疫検出はECLPlusウエスタンブロット検出試薬及び解析システムを用いて行った。最後に、膜をX線フィルムに露光した。低分子干渉RNAを用いたIGFBP3及びBAG1のノックダウンSilencerSelectPredesignedsiRNAは、製造者の説明書に従ってLipofectamine2000を用いてTE5、TE9及びTE12cloneA1細胞に導入した。IGFBP3及び又はBAG1を標的とする125pmolのsiRNA又はネガティブコントロールのsiRNAを5μlのリポフェクタミン2000と共に、500μlのOptiMEMImediumに混ぜた。本研究で使用したsiRNAの配列は表2に示す。結果として生じた混合液を2mLの培養液に加え、6穴培養プレートのウェルに蒔かれた細胞に接触させた。24時間保温した後、培養液を新鮮な培養液と交換した。更に24時間経った後、細胞の一部を回収し、MTSアッセイのために1×104細胞ウェルの密度で96穴プレートに蒔いた。あるいは、細胞は48時間保温した後、全RNAを単離した。全RNAは、IGFBP3及びBAG1のmRNA発現をRTPCR法で解析するために用いた。統計解析二群の有意差はスチューデントのt検定を用いて評価した。全ての解析はJMP8を用いて行い、両側性のP値を生成した。001より小さいP値の場合に、有意と判断した。結果TE株化細胞の放射線感受性WST8の切断の水準で示される細胞増殖は、調査した全ての時点において、TE5、TE9及びTE12cloneA1細胞間で違いが無かった。一方で、5及び10Gyの放射線を照射した細胞の生存率を測定することにより、TE5又はTE9細胞と比較して、TE12cloneA1細胞は有意に放射線感受性が高いことが示された。DNAマイクロアレイ解析TE12cloneA1及びTE5細胞の54359個の遺伝子の発現レベルについてDNAマイクロアレイ解析を行い、図2の左上隅の挿入図に示した。我々は、71個の遺伝子の発現レベルがTE12cloneA1細胞においてはTE5細胞よりも5倍以上高いことを見出した。これらを表3-1から3-4に示す。これらの71個の遺伝子のうち、我々はIGFBP3及びBAG1が実際に癌細胞の放射線感受性に関与することを証明した。結果を以下に示す。マイクロアレイのデータはRTPCR法及びウェスタン解析で確認した。それによると、IGFBP3及びBAG1のmRNA及びタンパク質の発現レベルは、いずれも、TE5又はTE9株化細胞の場合と比較して、TE12cloneA1株化細胞では有意に高かった。IGFBP3及び又はBAG1のノックダウンにより誘発される放射線感受性の変化次に、我々は、TE12cloneA1細胞におけるIGFBP3及び又はBAG1のノックダウンの影響を調べた。IGFBP3又はBAG1を標的とするsiRNAを細胞にトランスフェクトすることによって、それぞれのmRNAの発現量が減少した。IGFBP3については、ノックダウンの効率の平均値は75及び59であった。BAG1については、ノックダウンの効率の平均値は73及び78であった。放射線照射後72時間の時点での細胞生存率を調べることにより、IGFBP3又はBAG1をノックダウンした細胞は、ネガティブコントロールの細胞と比較して、有意に放射線感受性が低いことが示された。これらの結果は、IGFBP3及び又はBAG1をノックダウンすることによって、TE12cloneA1細胞の放射線感受性が減少することを示している。