"基材の表面に皮膜が形成されてなり、前記皮膜が、細胞接着性配列領域および絹由来配列領域を含むペプチドまたはタンパク質からなり、前記絹由来配列領域が、固体状態において逆平行βシート構造であることを特徴とする医療用材料。前記基材の構成材料が、チタン合金またはコバルト-クロム-モリブデン合金である請求項1に記載の医療用材料。前記皮膜が、アルコール処理されている請求項1または2に記載の医療用材料。前記アルコール処理におけるアルコールが、炭素数1~4の低級アルコールである請求項3に記載の医療用材料。前記アルコール処理が、アルコール濃度50v/v以上のアルコール水溶液中か、またはアルコール中に前記皮膜を浸漬することによって行われている請求項3または4に記載の医療用材料。前記細胞接着性配列領域が、固体状態においてランダムコイルである請求項1~5のいずれかに記載の医療用材料。前記細胞接着性配列領域が、GlyArgGlyAspSer配列を含む請求項1~6のいずれかに記載の医療用材料。前記GlyArgGlyAspSer配列の個数が、1~30個である請求項7に記載の医療用材料。前記ペプチドまたはタンパク質が、一般配列a:ThrGlyArgGlyAspSerProAlaGlyGlynAlaSerm配列中、nは1以上の整数を示す。mは1~30の整数を示す。で表される請求項1~8のいずれかに記載の医療用材料。インプラント、人工膝関節または人工股関節である請求項1~9のいずれかに記載の医療用材料。本発明の課題は、細胞接着性に優れ、かつシグナル伝達系を活性化できる医療用材料を提供することである。本発明者らは、上記課題を解決すべく鋭意研究を重ねた結果、以下の構成からなる解決手段を見出し、本発明を完成するに至った。1基材の表面に皮膜が形成されてなり、前記皮膜が、細胞接着性配列領域および絹由来配列領域を含むペプチドまたはタンパク質からなり、前記絹由来配列領域が、固体状態において逆平行βシート構造であることを特徴とする医療用材料。2前記基材の構成材料が、チタン合金またはコバルト-クロム-モリブデン合金である前記1に記載の医療用材料。3前記皮膜が、アルコール処理されている前記1または2に記載の医療用材料。4前記アルコール処理におけるアルコールが、炭素数1~4の低級アルコールである前記3に記載の医療用材料。5前記アルコール処理が、アルコール濃度50v/v以上のアルコール水溶液中か、またはアルコール中に前記皮膜を浸漬することによって行われている前記3または4に記載の医療用材料。6前記細胞接着性配列領域が、固体状態においてランダムコイルである前記1~5のいずれかに記載の医療用材料。7前記細胞接着性配列領域が、GlyArgGlyAspSer配列を含む前記1~6のいずれかに記載の医療用材料。8前記GlyArgGlyAspSer配列の個数が、1~30個である前記7に記載の医療用材料。9前記ペプチドまたはタンパク質が、一般配列a:ThrGlyArgGlyAspSerProAlaGlyGlynAlaSerm配列中、nは1以上の整数を示す。mは1~30の整数を示す。で表される前記1~8のいずれかに記載の医療用材料。10インプラント、人工膝関節または人工股関節である前記1~9のいずれかに記載の医療用材料。なお、本発明における細胞接着性とは、特定の最小アミノ酸配列が細胞のインテグリンレセプターに認識され、細胞が基材に接着し易くなる性質を意味するものとする。本発明によれば、細胞接着性を向上させ、かつシグナル伝達系を活性化させて、早期の組織形成を達成できるという効果がある。本発明の医療用材料は、生体内に埋植して使用するものであり、基材の表面に皮膜が形成されてなる。基材の構成材料としては、例えば整形外科分野や循環器分野等で使用される金属または非金属医療用材料等が挙げられ、具体例としては、チタン、チタン合金、コバルト-クロム-モリブデン合金、ステンレス鋼、ポリエチレン等の合成樹脂等が挙げられ、特にチタン合金またはコバルト-クロム-モリブデン合金であるのが好ましい。皮膜は、細胞接着性配列領域および絹由来配列領域を含むペプチドまたはタンパク質からなるとともに、絹由来配列領域が固体状態において逆平行βシート構造である。これにより、皮膜全体が水、緩衝溶液、体液、細胞培養用の培地等に対して不溶化され、埋植後組織が形成されるまで安定して存在するようになる。また、細胞接着性配列領域が、固体状態および含水状態のいずれにおいても高い運動性を示すようになり、その結果、細胞接着性が向上し、かつシグナル伝達系を活性化できる。これらの理由としては、以下の理由が推察される。すなわち、皮膜を構成している上述したペプチドまたはタンパク質は、細胞接着性配列領域および絹由来配列領域のそれぞれを、複数含んでいる。絹由来配列領域は疎水性であり、この絹由来配列領域が固体状態において逆平行βシート構造であると、隣接している絹由来配列領域同士が互いに架橋して水素結合を形成する。この水素結合が皮膜中に複数形成されていることによって、皮膜全体が水、緩衝溶液、体液、細胞培養用の培地等に対して不溶化されるものと推察される。また、細胞接着性配列領域は、隣接している水素結合の間に位置するようになり、これに起因して細胞接着性配列領域が固体状態および含水状態のいずれにおいても高い運動性を示すようになると推察される。なお、絹由来配列領域が固体状態において逆平行βシート構造であることの確認は、例えば13CCP/MAS測定等によって行うことができる。絹由来配列領域を固体状態において逆平行βシート構造とするには、例えば皮膜に対してアルコール処理や加湿処理等を施せばよい。特にアルコール処理を採用すると、簡単に効率よく絹由来配列領域を固体状態において逆平行βシート構造にできる。アルコール処理は、アルコールを水で希釈したアルコール水溶液中か、アルコール中に皮膜を浸漬することによって行うのが好ましい。アルコールとしては、例えば炭素数1~4の低級アルコール等が挙げられ、炭素数1~4の低級アルコールとしては、例えばメタノール、エタノール、プロパノール、ブタノール等が挙げられ、これらは1種または2種以上を混合して用いてもよく、特にメタノールおよびエタノールから選ばれる少なくとも1種であるのが好ましい。また、水としては、純水や超純水等の純度の高いものが好ましい。アルコール水溶液のアルコール濃度としては、50v/v以上であるのが好ましく、70v/v以上であるのがより好ましく、90v/v以上であるのがさらに好ましい。アルコール濃度があまり低いと、アルコール処理による効果が得られ難くなるので好ましくない。皮膜を浸漬する際のアルコール水溶液およびアルコールの温度としては、4~25°C程度が適当であり、皮膜の浸漬時間としては、15~60分程度が適当である。皮膜を構成している細胞接着性配列領域および絹由来配列領域のうち細胞接着性配列領域は、固体状態において絹由来配列領域から独立してランダムコイルであるのが好ましい。これにより、細胞接着性配列領域の運動性を向上させることが可能となる。この理由としては、細胞接着性配列領域が固体状態においてランダムコイルであると、細胞接着性配列領域が皮膜の表面に露出し易く、これに起因して運動性が向上するものと推察される。細胞接着性配列領域が固体状態においてランダムコイルであることの確認は、例えば13CCP/MAS測定等によって行うことができる。細胞接着性配列領域は、GlyArgGlyAspSer配列を含むのが好ましい。GlyArgGlyAspSer配列は、高い運動性を示す。GlyArgGlyAspSer配列の個数としては、1~30個であるのが好ましく、1~20個であるのがより好ましく、1~10個であるのがさらに好ましい。一方、絹由来配列領域は、絹由来の配列を含むものであり、具体例としては、AlaGlySerGlyAlaGly連鎖領域、GlyAlaGlyAlaGlyTyr連鎖領域、GlyAla連鎖領域を含む家蚕絹由来結晶部領域の配列;GlyAlaGlyAlaAlaAlaAlaAlaGlyGlyAlaGly配列、Ala連鎖領域とGlyリッチ領域とを含むクモ由来絹;AlaAlaGly連鎖領域、AlaGly連鎖領域、Ala連鎖領域とGlyリッチ領域とを含む野蚕絹由来結晶部領域;等が挙げられる。連鎖領域は、3回以上繰り返されているのが好ましい。上述した細胞接着性配列領域および絹由来配列領域を含むペプチドまたはタンパク質としては、上述した一般配列aで表されるものが好ましい。一般配列a中、nは1以上、好ましくは3~10、より好ましくは3~5の整数を示す。また、mは1~30、好ましくは1~20、より好ましくは1~10の整数を示す。上述したペプチドまたはタンパク質は、例えば遺伝子工学的手法;酵素法、固相合成法、液相合成法等の有機合成法;等によって作製することができる。得られたペプチドまたはタンパク質を、例えば緩衝溶液等に加えて溶解させ、基材の表面に塗布して乾燥させることによって、基材の表面に皮膜を形成することができる。緩衝溶液としては、例えばリン酸緩衝生理食塩水PBS、ヘキサフルオロイソプロパノールHFIP等が挙げられる。乾燥する際の雰囲気温度としては、20~25°C程度が適当である。形成される皮膜の厚さとしては、5~10μm程度が適当である。そして、形成された皮膜に対して上述したアルコール処理や加湿処理等を施し、絹由来配列領域を固体状態において逆平行βシート構造にし、本発明の医療用材料を得る。本発明の医療用材料上において、例えば歯髄細胞、骨芽細胞様細胞、血管内皮細胞等の種々の細胞は、有意に高い接着性および増殖性を示すとともに、シグナル伝達系の活性化を示すようになる。それゆえ、本発明の医療用材料は、例えばインプラント、人工膝関節、人工股関節等に好適に用いることができる。以下、作製例および実施例を挙げて本発明を詳細に説明するが、本発明は以下の作製例および実施例のみに限定されるものではない。<作製例1>上述した一般配列a中、nが3であり、mが10である配列:ThrGlyArgGlyAspSerProAlaGlyGly3AlaSer10で表されるタンパク質a1を含むタンパク質として、MetHisHisHisHisHisHisSerSerGlyLeuValProArgGlySerGlyMetLysGluThrAlaAlaAlaLysPheGluArgGlnHisMetAspSerProAspLeuGlyThrAspAspAspAspLysAlaMetAlaAspIleGlySerSerArgThrSerThrGlyArgGlyAspSerProAlaGlyGly3AlaSer10MetSerArgValAspLeuLysLeuAlaAlaAlaLeuGluHisHisHisHisHisHis配列配列番号1で表されるタンパク質Aを、遺伝子工学的手法によって作製した。具体的には、まず、絹フィブロインの各配列および細胞接着性配列をコードする遺伝子にタンデム重合のための制限酵素認識配列を付与したオリゴヌクレオチドをそれぞれ設計し、それらを重合して目的配列が10回繰り返されている遺伝子を構築した。次に、各遺伝子を発現ベクターpET30aに導入後、大腸菌BL21DE3pLysSを宿主としてタンパク質を発現させ、アフィニティ精製後に濃縮し、ゲルろ過クロマトグラフィーによってさらに精製してタンパク質Aを得た。そして、得られたタンパク質A中に目的のバンド、すなわちタンパク質a1が含まれていることをSDS-PAGE法によって確認した。<作製例2>AlaGlySerGlyAlaGlyAlaGlySerGlyAlaGlyAlaGlySerGlyGlyThrGlyArgGlyAspSerProAlaGlyGlyGlyAlaGlyAlaGlySerGlyAlaGly配列配列番号2で表されるペプチドBを、有機合成法によって作製した。具体的には、まず、Fmoc固相合成法によって合成スケール0.2ミリモルで目的配列を有する粗ペプチドを合成した。次に、得られた粗ペプチドを水に溶解させ、逆相液体クロマトグラフィーによって精製し、ペプチドBを得た。<医療用材料の作製>まず、作製例1で得られたタンパク質Aを緩衝溶液に加えて溶解させ、基材の表面に塗布して雰囲気温度23°Cで乾燥させ、基材の表面に厚さ5μmの皮膜が形成されてなる医療用材料Aを得た。使用した緩衝溶液および基材は、以下の通りである。緩衝溶液:GIBCO社製のリン酸緩衝生理食塩水PBS10010-023基材:チタン合金Ti-6Al-4V次に、得られた医療用材料Aの皮膜をアルコール処理し、医療用材料Bを得た。アルコール処理は、アルコール水溶液中に医療用材料Aを浸漬することによって行った。用いたアルコール水溶液の組成および温度、並びに浸漬時間は、以下の通りである。アルコール水溶液の組成:メタノールを純水で希釈したメタノール濃度90v/vのメタノール水溶液アルコール水溶液の温度:25°C浸漬時間:30分<評価>得られた医療用材料Bについて、細胞接着性およびシグナル伝達系の活性化を評価した。各評価方法を以下に示すとともに、その結果を図1および図2に示す。細胞接着性医療用材料Bの皮膜の表面に、マウス骨芽細胞様細胞を104cells/mm2で播種し、cellviabililtyassayによって1日、3日、7日毎に生細胞数をそれぞれ定量した。その結果を、試料No.1として図1に示す。また、試料No.1とは別に、上述したチタン合金からなる基材の表面に直接マウス骨芽細胞様細胞を104cells/mm2で播種し、cellviabililtyassayによって1日、3日、7日毎に生細胞数をそれぞれ定量した。その結果を、試料No.2として図1に示す。図1から明らかなように、細胞播種後1日において、試料No.1は試料No.2よりも生細胞数が多いことから、試料No.1は試料No.2よりも細胞接着性に優れているのがわかる。また、試料No.1は細胞播種後3日でコンフルエントに達しているのに対し、試料No.2は細胞播種後7日でコンフルエントに達する結果を示した。これらの結果から、試料No.1は試料No.2よりも細胞接着性に優れ、かつ高い細胞増殖性を示すことがわかる。シグナル伝達系の活性化医療用材料Bの皮膜の表面に、マウス骨芽細胞様細胞を104cells/mm2で播種し、細胞播種後2時間において、DAPI、抗ビンキュリン抗体、抗pFAK抗体によって染色をした。その結果を、図2a~cに示す。なお、図2a~cの詳細は、以下の通りである。図2a:接着斑ビンキュリンの蛍光染色結果を示す図である。図2b:活性化ドメインpFAKの蛍光染色結果を示す図である。図2c:図2a,bを重ね合わせた状態を示す図である。図2a~cから明らかなように、ビンキュリンとpFAK、すなわち活性化ドメインの分布とに重なりが得られていることから、シグナル伝達系が活性化されているのがわかる。作製例1,2で得られたタンパク質A,ペプチドBについて、構造を評価した。具体的には、タンパク質A,ペプチドBの固体状態における13CCP/MAS測定を行った。測定装置および測定条件は、以下の通りである。測定装置:Brucker社製のAVANCE-400測定条件:SpectFreqobs1006MHzspectfreqirr400MHzH90pulse6mseccontacttime2mspulsedelay3secRG2048acqtime75msecspinrate8kHzまた、15配列配列番号3、5配列配列番号4、ペプチドBをAlaGlySerGlyAlaGly313CAla7GlySerGlyAlaGlyAlaGlySerGlyGlyThr213CGly19Arg113CGlyAspSerProAlaGlyGlyGlyAlaGlyAlaGlySerGlyAlaGlyで表されるように同位体ラベル化したものについても、タンパク質A,ペプチドBと同様にして固体状態における13CCP/MAS測定を行った。これらの測定結果を、図3a~eに示す。なお、15配列配列番号3、5配列配列番号4はいずれも、コントロールであり、ペプチドBと同様にFmoc固相合成法によって作製したものである。また、図3a~eの詳細は、以下の通りである。図3a:15配列図3b:5配列図3c:タンパク質A図3d:実線が同位体ラベル化したペプチドB、破線が同位体ラベル化していないペプチドB図3e:図3dにおける実線と破線との差を示すスペクトル図3a~cにおけるAlaCβの化学シフトと波形から明らかなように、絹由来配列領域AlaGlySerGlyAlaGlyが、図3aではtypeIIβturn構造SilkIであり、図3b,cでは主に逆平行βシート構造SilkIIであるのがわかる。また、図3d,eから明らかなように、絹由来配列領域AlaGlySerGlyAlaGlyが逆平行βシート構造であり、細胞接着性配列領域GlyArgGlyAspSerがランダムコイルであるのがわかる。作製例2で得られたペプチドBについて、乾燥状態と含水状態の運動性を評価した。同位体ラベル化したペプチドBについて25°Cの雰囲気温度中で、13CCP/MAS測定を行った。測定装置および測定条件は、以下の通りである。測定装置:Brucker社製のAVANCE-400測定条件:SpectFreqobs100Hzspectfreqirr400MHzH90pulse45seccontacttime2mspulsedelay3secRG2048acqtime29msecspinrate8kHz次に、乾燥状態にある同位体ラベル化したペプチドBを、水温25°Cの水中に30分間浸漬し含水状態にした後、乾燥状態の場合と同様にして13CCP/MAS測定を行った。乾燥状態および含水状態の各々の測定結果を、図4に示す。図4から明らかなように、乾燥状態における複数のピークのうちGlyAsp部位のピークのみが、含水状態において減少しているのがわかる。この結果より、細胞接着性配列領域のGlyArgGlyAspSer配列は、含水状態において高い運動性を示すのがわかる。"