"以下1から3の特徴を有する、IgG型抗体。1分子中の一部のジスルフィド結合が切断され、チオール基に還元されている、2ジスルフィド結合の切断によって低分子化していない、及び、3抗原結合能を保持している。以下1から3の特徴を有する、IgG型抗体。1分子中の一部のジスルフィド結合が切断され、この切断されて生じたチオール基を利用して他の物質が結合されている、2ジスルフィド結合の切断によって抗体自体は低分子化していない、及び、3抗原結合能を保持している。ジスルフィド結合切断率が40以上100未満である、請求項1又は2に記載の抗体。本発明の目的は、抗原結合能の低下又は喪失を招くことなく、標識物質等を結合することが可能な抗体を提供することにある。前記目的に鑑みて成された本発明は、以下1から3の特徴を有するIgG型抗体である。1分子中の一部のジスルフィド結合SS結合が切断され、チオール基SH基に還元されている、2SS結合の切断によって低分子化していない、及び、3抗原結合能を保持している。また本発明は、以下1から3の特徴を有するIgG型抗体である。1分子中の一部のSS結合が切断され、この切断されて生じたSH基を利用して他の物質が結合されている、2SS結合の切断によって抗体自体は低分子化していない、及び、3抗原結合能を保持している。以下、本発明の抗体を詳細に説明する。本発明の抗体は、IgG型抗体に対してゆるやかな還元処理をして製造し得るものである。IgG型抗体は、ラクダIgG抗体等、特殊なものを除き、二本のH鎖重鎖と二本のL鎖軽鎖からなり、H鎖-L鎖間がそれぞれ1個以上のSS結合で連結される一方、H鎖同士もまた複数のSS結合によって連結されている以下、天然形態のIgG型抗体を、インタクト抗体という。本発明の抗体を製造するのに用いるインタクト抗体としては、ヒト、サル、ウサギ、イヌ、ヒツジ、マウス、ラット、ラクダ等、由来する動物種の区別無く、またそのサブクラスの制限無く使用することができる。また抗体の種類としてはモノクローナル抗体であってもポリクローナル抗体であっても良く、また更には遺伝子組換えリコンビナントの手法により製造されたIgG型抗体本明細書においては、便宜上、当該抗体もインタクト抗体と記載するであっても良い。ただし、後述する還元処理の前に、適切な精製操作を行なって夾雑物を除去しておくことが好ましい。本発明の抗体を製造するための方法としては、還元剤を用いた還元処理が例示できる。還元剤としては、2-メルカプトエチルアミン、ジチオトレイトールDTT、β-メルカプトエタノール、トリス2-カルボキシエチルホスフィン塩酸塩TCEP等、一般に入手可能な還元剤を使用することができる。還元剤による還元処理は、抗体の抗原結合能を低下せず、かつ、還元処理を阻害しない緩衝剤によって適切なpHに調製した緩衝液中で実施すれば良い。そのような緩衝液として例えば、リン酸緩衝液、トリスヒドロキシメチルアミノメタンTris緩衝液、グリシン緩衝液であって、pHがpH6.0からpH7.5、好ましくはpH6.5から7.0の緩衝液があげられる。特に、本発明の抗体を製造した後、引き続き後述するような標識物質の結合を行なう場合であって、その際にマレイミドを使用する場合には、マレイミドの加水分解を防止するためにpHを中性付近、具体的にはpH6.0からpH7.0とすると好ましい。上記緩衝液には、SH基の酸化を抑制するため、EDTAやEGTA等の酸化防止剤を更に添加すると好ましい。還元処理は、インタクト抗体の一部のSS結合を切断し、その切断によってインタクト抗体を低分子化することがなく、かつ処理後の抗体が抗原結合能を維持する、即ち、インタクト抗体の二本のH鎖間の全SS結合を切断することのなく、H鎖とL鎖間の全SS結合を切断することのなく、かつ処理後の抗体が抗原結合能を維持するものであれば良い。例えばH鎖間の全SS結合が切断されればH鎖間の連結が解かれ、インタクト抗体は2分子化し、各分子はなお抗原結合能を保持するとしても、その分子量は1/2になり、低分子化してしまう。またいずれかのH鎖とL鎖間の全SS結合が切断されれば鎖間の連結は解かれ、いずれか一方の分子はなお抗原結合能を保持するとしても、分子量は低分子化してしまう。本発明の抗体を前記したような還元剤を用いた還元処理によって製造する場合、温度条件として4°Cから40°C、好ましくは35°Cから37°Cの範囲を選択する。還元反応時間としては温度条件によって異なるが、4°Cから8°Cの場合、8時間から36時間、好ましくは12時間から24時間の範囲を選択し、35°Cから37°Cの場合、60分から240分、好ましくは90分から180分の範囲を選択し、かつ、単に溶液を室温放置して処理する方法等が例示できる。また還元剤を用いる場合、還元処理温度や処理時間のみならず、処理されるべきインタクト抗体と還元剤のモル比の制御も重要である。上記例示した還元剤のうち、例えば、2-メルカプトエチルアミンを用いる場合であって、上記例示したpH、温度及び反応時間で処理を行なう場合、インタクト抗体のモル濃度1に対し、還元剤のモル濃度は30,000から1,500,000とすると好ましい。本発明の抗体の具体的な形態は、インタクト抗体としてマウス由来の抗体を例に説明すれば、少なくともH鎖とL鎖間のSS結合の一部が切断されたものと、少なくともH鎖同士のSS結合の一部が切断されたものの二種類である。いずれのものも、低分子化インタクト抗体からの、当該抗体を構成するペプチド鎖の脱離が生じていないため、例えば上記還元処理を行なった後にゲルろ過クロマトグラフィーに供する等して、インタクト抗体と同様の溶出時間で溶出するピークを取得する等すれば良い。また抗原との反応性を保持しているか否かは、例えば抗原と混合した後にゲルろ過クロマトグラフィーに供する等して抗原と免疫複合体を形成したことを試験すれば確認できる。本発明の抗体の好ましい態様として、SS結合切断率が40以上100未満の抗体があげられる。なお本明細書において、SS結合の切断率とは、1分子のインタクト抗体のうち還元処理によって切断されたSS結合数を、1分子のインタクト抗体に存在するSS結合の総数で除した値である。またSS結合の切断率については、5,5-ジチオビス2-ニトロ安息香酸DTNB等SH基に反応する試薬を用いて定量することができる。以上に説明した本発明の抗体は、その分子中の一部のSS結合が切断されているが、本発明者らの知見によれば、インタクト抗体と比較して抗原との結合能が向上する場合がある。これは、インタクト抗体のFc部分に存在するSS結合の一部が切断された結果、インタクト抗体が有する2つの抗原結合部位の立体構造上の自由度が増し、より自由に抗原と反応可能になったからと推測される。なお、還元処理を行なった抗体に関しては、後述する他の物質を結合する操作に供する場合を除き、還元処理により切断されたSH基のSS再結合を防止するための処理キャッピングを行なうと好ましい。キャッピングは、例えばN-エチルマレイミドNEM等を使用することにより容易に行なうことができる。本発明の抗体は、以上に説明した還元処理によって分子中の一部のSS結合が切断され、残基としてSH基を露出している。そこで本発明では、このSH基を利用して、例えば標識物質等を結合させることが可能である。結合させる物質としては、後述するSH基との結合性を有する結合剤に結合可能なものであれば制限はない。例えば、免疫測定で標識物質として使用されている酵素、化学発光物質、蛍光物質又は呈色物質等、免疫測定で使用される担体、アビジンやビオチン等の特異的な結合ペアの一方、そして液体クロマトグラフィー用担体等が例示できる。中でも、抗原との高い反応性が要求される免疫測定を実施するため、本発明の抗体に上記標識物質を結合させて標識抗体とすると特に好ましい。還元処理した抗体と上記物質とを結合するためには、SH基と特異的に結合する結合試薬として、マレイミド基を有する試薬やブロモアセトアミド基を有する試薬等を使用すれば良い。マレイミド系試薬としては、例えば入手の容易性等の観点から、N-スクシンイミジル-4-N-マレイミドメチル-シクロヘキサン-1-カルボキシレートSMCCが特に好ましい結合試薬としてあげられる。このようにして標識物質等を結合させた後には、還元処理により切断されたSH基であって、かつ結合剤が結合しなかったSH基のジスルフィド再結合を防止するため、キャッピングを行なうことが好ましい。標識物質等を結合した抗体を得るには、例えばゲルろ過クロマトグラフィーに供する等して、結合の操作に供する前の抗体と比較してより高分子化したピークを取得する等すれば良い。またそのようにして得た抗体が抗原との反応性を保持しているか否かは、例えば標識物質を結合した場合には免疫測定における標識抗体として使用し、既知量の抗原をサンプルとして免疫測定を実施すれば、抗原と免疫複合体を形成することを通じて確認できる。本発明によれば、1分子中の一部のジスルフィド結合SS結合が切断され、チオール基SH基に還元されている、2SS結合の切断によって低分子化していない、そして3抗原結合能を保持している、という特徴を有する抗体が提供される。この抗体は、SS結合の一部が切断されているとはいえ、インタクト抗体と同様の分子構造を維持しているため、抗原結合能を失うことはなく、かつ、標識物質等を結合することが可能なSH基を有している。従って本発明の抗体は、免疫測定で使用する標識抗体を製造する材料として特に有利なものである。なお、SS結合切断率は40以上100未満とすると好ましい。加えて本発明の抗体は、広く一般に入手可能な還元剤を使用して安価かつ短時間で製造することが可能であり、しかも、還元処理の操作自体も還元剤を使用する等により簡便に実施可能である。以下実施例により本発明の一実施形態を説明するが、本発明はこれら実施例に限定されるものではない。実施例1還元処理酵素標識抗体を用いた心筋トロポニンI測定用免疫反応試薬の評価1標識抗体の製造ウシ小腸由来アルカリ性ホスファターゼALP15mgを1mM塩化マグネシウム、0.1mM塩化亜鉛を含むpH7.6の50mMほう酸緩衝液にて一晩透析した。N-スクシンイミジル-4-N-マレイミドメチル-シクロヘキサン-1-カルボキシレートSMCCをN,N-ジメチルホルムアミドで2.85mMになるよう溶解し、前記透析したALP溶液に添加した後、30°Cで90分間反応させた。反応後、ゲルろ過用カラムTSK-GELG2000SW、東ソー株式会社製にてSMCCが導入されたALPSMCC導入ALPを分取した。抗心筋トロポニンIマウスモノクローナル抗体IgG型インタクト抗体5mgを、5mMEDTAを含むpH6.0の100mMリン酸緩衝液にて一晩透析した。2-メルカプトエチルアミン塩酸塩2-MEAをpH6.0の100mMリン酸緩衝液で200mMになるように溶解し、透析後の抗体に5volになるように添加して、37°Cで240分間、還元処理を行なった。処理後の抗体還元処理抗体を前記ゲルろ過用カラムに供し、インタクト抗体と同一の溶出時間に出現したピーク画分を分取した。この時のクロマトグラムを図1に示す。図1に示されるように、還元処理抗体がインタクト抗体と同一の溶出時間9.6分で溶出することから、還元処理による低分子量化が生じていないことが分かる。以上のようにして取得した処理抗体1mgに対し、SMCC導入ALP2.5mgを混合し、4°Cで一晩反応させた。反応後、ゲルろ過用カラムTSK-GELG3000SWXL、東ソー株式会社製にてSMCC導入ALPが結合した処理抗体を取得した。比較のため、還元処理していないインタクトの抗心筋トロポニンI抗体を用いて、同様の手法でアルカリ性ホスファターゼ標識抗心筋トロポニンI抗体比較抗体を得た。2心筋トロポニンI測定試薬の作製上記1で使用したインタクト抗体とは異なる部位で心筋トロポニンIと結合する抗体を担体に結合し、上記1で製造したSMCC導入ALPが結合した処理抗体を加えて凍結乾燥した。同様にして、比較抗体を加えて凍結乾燥し、比較試薬を製造した。3心筋トロポニンI測定試薬の評価上記2で製造した試薬と比較試薬を、免疫測定装置AIA-1800、東ソー株式会社製に供して免疫測定を行なった。測定サンプルとして、既知量の心筋トロポニンIを含む標準品セットEテストTOSOHIIcTnI3、東ソー株式会社製を用い、37°Cで10分間反応させた。B/F分離操作の後、ALPの基質である4-メチルウンベリフェリルリン酸4MUPを加え、ALPによって4MUPが分解されて生成する4-メチルウンベリフェロン4MUの増加速度nmol/秒を、4MUからの蛍光強度を測定して算出した。この増加速度は試薬中の抗体とサンプル中の心筋トロポニンIの反応性及びサンプル中の心筋トロポニンIの量に比例している。また、サンプルは既知濃度の心筋トロポニンIを含んでいるため、任意の2点の濃度における蛍光強度の増加速度の差を心筋トロポニンIの濃度の差で割ることで、単位心筋トロポニンIあたり蛍光強度の増加速度を算出することができる。算出された数値は感度と同義であるため、2種類の試薬の数値を比較することで、感度の比較を行なった。結果を表1及び表2に示す。表1は各心筋トロポニンI濃度における蛍光強度の増加速度を、表2は表1から算出した単位心筋トロポニンIあたり蛍光強度の増加速度、すなわち感度をそれぞれ示す。表2から分かるように、本発明の抗体還元処理抗体を標識抗体とした試薬は、インタクト抗体を標識抗体とした試薬と比較して約2倍の感度を有していた。実施例2心筋トロポニンI測定用免疫反応試薬を用いたSS結合切断率の評価1還元処理抗体の作製まず、インタクト抗体中のSS結合を完全に還元切断した抗体を作製した。抗心筋トロポニンIマウスモノクローナル抗体IgG型インタクト抗体5mgを、5mMEDTAを含むpH6.0の100mMリン酸緩衝液にて一晩透析した。2-メルカプトエチルアミン塩酸塩2-MEAをpH6.0の100mMリン酸緩衝液で2Mになるように溶解し、透析後の抗体に5volになるように添加して、37°Cで24時間、還元処理を行なった。SS結合を完全に還元した処理抗体を前記ゲルろ過用カラムに供し、ピーク画分を分取した。この時のクロマトグラムを図2に示す。図2に示されるように、処理抗体がインタクト抗体よりも遅い溶出時間10.4分で溶出することから、還元処理により抗体が低分子量化していることが分かる。一方で還元処理時間還元処理条件を変えた抗体の作製を行なった。2-メルカプトエチルアミン塩酸塩2-MEAをpH6.0の100mMリン酸緩衝液で200mMになるように溶解し、透析後の抗体に5volになるように添加して、37°Cで30分から240分間、還元処理を行なった。同様に、処理後の抗体を前記ゲルろ過用カラムに供した結果、処理抗体がインタクト抗体と同じ溶出時間9.6分で溶出しており、還元処理による低分子量化が生じていないことを確認した。2SS結合切断率の算出サンプル用、ブランク用に試験管を用意し、これに5mMのEDTAを添加した0.1Mリン酸緩衝液pH8.0800μLを注入した。サンプル用試験管に上記1の抗体溶液を200μL、ブランク用試験管に0.1Mリン酸緩衝液pH7.0を200μL加え、ボルテックスミキサーで撹拌した。一方、5,5-ジチオビス2-ニトロ安息香酸DTNBを0.1Mリン酸緩衝液pH7.0に溶解し、1mMのDTNB溶液を調製した。1mMのDTNB溶液をそれぞれの試験管に20μL加え、撹拌の後、ブランク用試料を分光光度計にセットし、測定波長412nmで測定を行なった。吸光度から計算によりSS結合切断数個/分子を算出した。還元処理による低分子量化が生じていた場合、還元処理が完全に進行しているといえ、その時のSS結合切断数は6.13個/分子であった。上記1で還元処理時間を変えて作製した還元抗体のSS結合切断数も同様に算出し、還元が完全に進行した際のSS結合切断数6.13で除することで、SS結合切断率を算出した。3標識抗体の作製上記1で取得した、それぞれの条件の処理抗体1mgに対し、実施例11で作製したSMCC導入ALP2.5mgを混合し、4°Cで一晩反応させた。反応後、ゲルろ過用カラムTSK-GELG3000SWXL、東ソー株式会社製にてSMCC導入ALPが結合した処理抗体を取得した。比較のため、還元処理していないインタクトの抗心筋トロポニンI抗体を用いて、同様の手法でアルカリ性ホスファターゼ標識抗心筋トロポニンI抗体比較抗体を得た。4心筋トロポニンI測定試薬の作製上記1で使用したインタクト抗体とは異なる部位で心筋トロポニンIと結合する抗体を担体に結合し、上記3で製造したSMCC導入ALPが結合した処理抗体を加えて凍結乾燥した。同様にして、比較抗体を加えて凍結乾燥し、比較試薬を製造した。5心筋トロポニンI測定試薬の評価上記4で製造した試薬と比較試薬を、実施例13と同様な方法で免疫測定を行ない、感度の比較を行なった。上記2で算出したSS結合切断率と感度を比較した結果を表3及び図3に示す。表3及び図3から分かるように、SS結合切断率の上昇にしたがって感度が上昇し、SS結合切断率が40以上の時に、インタクト抗体を標識抗体とした場合よりも高い感度が認められた。また、SS結合切断率が50程度から感度が最大になり、以降、切断率が上昇しても一定の感度を保っていたが、SS結合切断率が100になる抗体自体が低分子化されると感度の低下が認められた。このことから、SS結合切断率は40以上100未満が好ましく、50以上90以下が特に好ましいことがわかる。"