"疎水性基を共有結合で導入したポリアニオン性多糖類誘導体と塩濃度が50mM以上200mM以下の塩溶液からなるハイドロゲルであって、その希釈溶液中において平均粒径が100~2000nmの凝集構造を有するハイドロゲル。ポリアニオン性多糖類がカルボキシメチル基を有する多糖類である請求項1に記載のハイドロゲル。ポリアニオン性多糖類がカルボキシメチルセルロースである請求項1に記載のハイドロゲル。疎水性基がリン酸エステル構造を有するものである請求項1から3のいずれかに記載のハイドロゲル。疎水性基が下記式1で示されるホスファチジル基を有するものである請求項1から3のいずれかに記載のハイドロゲル。ここで、Xは水素原子またはアルカリ金属であり、R1およびR2は、それぞれ独立に、直鎖状または分岐鎖を有する炭素数9~21のアルキル基またはアルケニル基である。製造工程に70°C以上140°C以下の加熱工程を含む、凝集体の平均粒径が120~1500nmである請求項1から5のいずれかに記載のハイドロゲル。製造工程に100°C以上、大気圧~10気圧の加圧条件下での加熱工程を含む、凝集体の平均粒径が150~1200nmである請求項1から5のいずれかに記載のハイドロゲル。疎水性基の当量が0.25~5.0mol/糖残基である請求項1から7のいずれかに記載のハイドロゲル。溶媒が50mM以上200mM以下の塩化ナトリウムを含む塩溶液である請求項1から8のいずれかに記載のハイドロゲル。溶媒がpHを6.5以上7.5以下に調整した120mM以上180mM以下の塩化ナトリウムを含む緩衝液であり、凝集体の平均粒径が200~1000nmである請求項1から8のいずれかに記載のハイドロゲル。溶媒がリン酸緩衝生理食塩水である請求項1から8のいずれかに記載のハイドロゲル。多糖類誘導体の濃度が0.3~3.0重量である請求項1から11のいずれかに記載のハイドロゲル。請求項1から12のいずれかに記載のハイドロゲルを、孔径が5μm以上の多孔質フィルターでろ過して得られるハイドロゲル。粒子径が10μm以上の不溶性微粒子が1mLあたり3000個以下、および/または粒子径が25μm以上の不溶性微粒子が1mLあたり300個以下である請求項13に記載のハイドロゲル。疎水性基を導入したポリアニオン性多糖類誘導体と塩濃度が50mM以上200mM以下の塩溶液とを含む混合物を調製する工程、およびそれを加熱処理する工程を含む、ハイドロゲルの製造方法。加熱処理をする工程が、70~140°Cで1分間以上3時間以下処理する工程である請求項15に記載の製造方法。塩溶液が生理食塩水である請求項15または16に記載の製造方法。加熱処理後、さらに孔径が5μm以上の多孔質フィルターでろ過する工程を含む、請求項15から17のいずれかに記載の製造方法。<多糖類誘導体>本発明のハイドロゲルおよびその製造方法において、多糖類誘導体の原料として用いられる多糖類としては、ポリアニオン性多糖類であれば特に限定されない。具体例としては、ヒアルロン酸、アルギン酸、ペクチン、ポリガラクチュロン酸などの天然多糖類、カルボキシメチルプルラン、カルボキシメチルキチン、カルボキシメチルキトサン、カルボキシメチルマンナン、カルボキシメチルスターチ、カルボキシメチルデキストラン、カルボキシエチルセルロース、カルボキシメチルプルランなどのカルボキシアルキル多糖類、酸化セルロースや酸化でんぷんなどの酸化多糖類、コンドロイチン硫酸、デルマタン硫酸、ヘパリンやヘパラン硫酸など硫酸基を含む多糖類を挙げることができる。そのなかでもカルボキシメチルセルロースやヒアルロン酸が好ましく、特にカルボキシメチルセルロースが好ましい。原料多糖類の重量平均分子量は特に限定されないが、好ましくは5万ダルトン以上100万ダルトン以下、より好ましくは5万ダルトン以上50万ダルトン以下である。これらポリアニオン性多糖と塩を形成するカチオンにも特に限定はないが、プロトンや金属イオン、具体的にはナトリウム、カリウム、リチウム、カルシウム、マグネシウムなどの金属イオン、有機アンモニウムなどの有機カチオン類が例示できる。これらの中でも、カルボキシメチルセルロースナトリウム塩が目的とする効果を得られやすく好ましい。ポリアニオン性多糖に導入する疎水基としては特に限定されないが、好ましくはリン酸エステル構造を有するものであり、より好ましくは下記式1で示されるホスファチジル基を有するものである。式1中、Xは水素原子またはアルカリ金属である。R1およびR2は、それぞれ独立に、直鎖状または分岐鎖を有する炭素数9~21のアルキル基またはアルケニル基である。好ましい多糖類誘導体の一例として、下記式2の繰り返し単位を有するものが例示できる。式1中、R3、R4、およびR5は、それぞれ独立に、下記式1-a、1-b、および1-cからなる群より選ばれる。式1-bおよび式1-c中、Xは水素原子またはアルカリ金属である。式1-c中、R6およびR7は、それぞれ独立に、直鎖状または分岐鎖を有する炭素数9~21のアルキル基またはアルケニル基である。式1-aで表される置換基の当量および式1-bで表される置換基の当量は特に限定されないが、ポリアニオン性多糖類誘導体が50mM以上200mM以下の塩化ナトリウムを含む塩溶液に溶解する当量であることが好ましい。式1-cで表される置換基の当量は、0.25~5.0mol/糖残基であることが好ましい。式1-bおよび式1-c中のXは水素原子またはアルカリ金属であるが、溶解性の観点から、Xはアルカリ金属であることが好ましい。生体内での安全性を考慮すると、より好ましくはナトリウムである。式1-c中のR6およびR7は、それぞれ独立に、直鎖状または分岐鎖を有する炭素数9~21のアルキル基またはアルケニル基であるが、溶解性の観点から、炭素数9~21のアルケニル基が好ましく、より好ましくは炭素数17のアルケニル基である。<多糖類誘導体によるハイドロゲル>上記多糖類誘導体は、特定条件で塩溶液と混合し、加熱することによりハイドロゲルを形成することができるかかるハイドロゲルを、以下、単にハイドロゲルと略記することがある。用いる塩溶液は塩濃度が50mM以上200mM以下であり、より好ましくは50mM以上200mM以下の塩化ナトリウムを含む塩溶液であり、さらに好ましくはpHを6.5以上7.5以下に調整した120mM以上180mM以下の塩化ナトリウムを含む緩衝液であり、最も好ましくはリン酸緩衝生理食塩水である。一般的に、高分子は塩強度が増すと塩析の効果により溶解性が減少するが、本発明の方法を用いれば、リン酸緩衝生理食塩水に対しても多糖類誘導体を溶解させて必要な強度を得ることが可能である。多糖類誘導体の濃度については、水100重量部に対し、本発明で用いられる多糖類誘導体を0.1~5.0重量部、好ましくは0.3~3.0重量部含むことにより、適度な粘弾性を有するハイドロゲルを得ることができる。通常、いずれのハイドロゲルも、ポリマーの濃度を高めることにより所望のゲル強度を得ることができるが、本発明のハイドロゲルは、水に対して5重量以下の低いポリマー濃度においても、十分なゲル粘弾性を得ることができる。具体的に好ましいハイドロゲルの物性としては、ハイドロゲルの入った容器を傾けても流れ落ちない程度の粘弾性を有するものであり、スパーテルなどで触ると容易に変形することが可能で、患部に塗布することが容易な状態である。また、かかるハイドロゲルは注射器など細管を有する器具で注入することが可能である。ハイドロゲルの好ましい粘弾性としては、温度37°Cの条件で、レオメーターとよばれる動的粘弾性測定装置を用い、角速度10rad/secで測定したときの絶対粘度が、0.5~100Pasecが好ましく、さらに好ましくは2~30Pasecである。この範囲が注入型ゲルとしての取り扱い性の良さと体内での滞留性を同時に満足させられる範囲であるが、使用目的により適宜変更できる。本発明のハイドロゲルの凝集体粒径としては、温度20°Cの条件で、動的光散乱光度計を用い、測定波長532.0nm、多糖類誘導体濃度0.3重量、検出角度90.0°としたときの平均粒径が、100~2000nmが好ましく、さらに好ましくは120~1500nmであり、より好ましくは150~1200nmであり、最も好ましくは200~1000nmである。この範囲が注入型ゲルとしての取り扱い性の良さと体内での滞留性、さらには長期安定性とフィルターろ過性を満足させられる好適範囲である。本発明のハイドロゲルを製造する際の加熱温度は70°C以上140°C以下であり、好ましくは100°C以上135°C以下である。本発明のハイドロゲルを製造する際の加熱時間は、加熱温度に応じてハイドロゲルがろ過可能になるのに要する最短の時間以上であれば特に限定されないが、多糖類誘導体の熱分解を考えると、好ましくは1分以上3時間以内である。なお、かかるハイドロゲルの凝集体の粒径分布は、加熱処理を進めるに従って小さい方向にシフトするが、やがては一定範囲に収束する。本発明のハイドロゲルを製造する際の加熱時の圧力は、加熱温度に応じて水が沸点に達しない圧力であれば特に限定されないが、好ましくは大気圧~10気圧である。本発明のハイドロゲルは、ろ過が可能である。より具体的には、孔径が5μm以上の多孔質フィルターでろ過することができる。これは、加熱処理により、ハイドロゲル中における多糖類誘導体分子の凝集体の平均粒径が小さくなるためと思われる。一方、本発明のハイドロゲルにおける多糖類誘導体の平均分子量は、加熱によっても減少していないことが確認されている。本発明の製造方法は、疎水性基を導入したポリアニオン性多糖類誘導体と、塩濃度が50mM以上200mM以下の塩溶液とを含む混合物を調製する工程、およびそれを加熱処理する工程を含む、ハイドロゲルの製造方法であるが、加熱処理後、さらに孔径が5μm以上の多孔質フィルターでろ過する工程を加えることが好ましい。本発明のハイドロゲルの用途としては、癒着防止材、癒着防止材以外の医療用途創傷被覆剤充填材細胞培養培地薬物輸送システムの担体など、ヘアケア製品や肌の保湿剤などの日用品用途、化粧品用途などへの使用が可能である。1実施例および比較例に使用した材料は以下の通りである。iカルボキシメチルセルロースナトリウムCMCNa:第一工業製薬株製;P603Aヒドロキシル基のカルボキシメチル基への置換度0.7、重量平均分子量25万ダルトン、PRSヒドロキシル基のカルボキシメチル基への置換度0.8、重量平均分子量23万ダルトン、PM250-Lヒドロキシル基のカルボキシメチル基への置換度0.7、粘度平均分子量54万ダルトンiiテトラヒドロフランTHF:和光純薬工業株製iiiL-α-ジオレオイルホスファチジルエタノールアミンDOPE:日本油脂株製、iv1-エチル-3-3-ジメチルアミノプロピルカルボジイミド塩酸塩WSCHCl:大阪有機合成株製v3,4-ジヒドロ-3-ヒドロキシ-4-オキソ-1,2,3-ベンゾトリアジンDHBT:和光純薬工業株製viN-ヒドロキシスクシンイミドHOSu:和光純薬工業株製viiリン酸緩衝生理食塩水;塩化ナトリウムNaCl:和光純薬工業株製136.9mM、リン酸二水素ナトリウムNaH2PO42H2O:和光純薬工業株製2.92mM、リン酸水素ナトリウム水和物Na2HPO412H2O:和光純薬工業株製9.02mMviiiリン酸緩衝液;リン酸二水素ナトリウム2.92mM、リン酸水素ナトリウム水和物9.02mMixHEPES緩衝液;2-[4-2-ヒドロキシエチル-1-ピペラジニル]エタンスルホン酸HEPES:GIBCO製50mM2多糖類誘導体中のホスファチジルエタノールアミン含量の測定多糖類誘導体中のホスファチジルエタノールアミン含量は、1H-NMRスペクトルのピークの積分比から求めた。3ハイドロゲルの長期安定性試験40°Cでの加速試験を行った。調製直後と40°C保存後のハイドロゲルの粘度を粘弾性測定装置<RFSIII>ティーエイインスツルメントジャパンを用いた測定により求めた。4フィルターろ過前後の粘度測定ハイドロゲルを詰めたシリンジの先にPVDFフィルター孔径5μmを付け、25°C条件下でシリンジを手で押してろ過し、ろ過前後の粘度を粘弾性測定装置<RFSIII>ティーエイインスツルメントジャパンを用いて測定した。5動的光散乱法による粒径測定ファイバー光学動的光散乱光度計<FDLS-3000>大塚電子を用いて以下の条件にて粒径分布を求めた。測定条件:測定温度20°C、測定波長532.0nm、測定濃度0.3重量、検出角度90.0°、積算回数100回、前処理PVDFフィルター孔径5μmろ過6フィルターろ過前後の糖濃度測定ハイドロゲルを詰めたシリンジの先にPVDFフィルター孔径5μmを付け、25°C条件下でシリンジを手で押してろ過し、ろ過前後の糖濃度を硫酸アントロン法により定量した。7フィルターろ過前後の不溶性微粒子数測定ハイドロゲルを詰めたシリンジの先にPVDFフィルター孔径5μmを付け、25°C条件下でシリンジを手で押してろ過し、ろ過前後の不溶性微粒子数を液体用自動微粒子測定器System9703-150HIACを用いて測定した。8多糖類誘導体の分子量の測定CMCNaを100mM塩化ナトリウム水溶液に0.02-0.05重量の濃度で溶解させ、ウベローデ粘度計を用いてCMCNaの固有粘度を測定し、粘度平均分子量を算出した。[実施例1]1原料合成CMCNaPRS3000mgを水とテトラヒドロフランの1:1体積比の混合溶媒に溶解させた。この溶液に、DOPE349mg0.50mmol、WSCHCl143mg0.74mmol、およびDHBT324mg1.98mmolを加えた。反応終了後、反応溶液をエタノールに加えることにより多糖類誘導体を析出させ、ろ取した。得られた固体をエタノールで洗浄し、減圧乾燥した。得られた多糖類誘導体のDOPEによる置換度は1.47mol/糖残基であった。2ハイドロゲルの調製1で合成した多糖類誘導体20mgをリン酸緩衝生理食塩水1980mgに溶解し、濃度1.0重量の溶液を調製した後、121°Cで20分間加熱した。3ハイドロゲルの粘度および平均粒径測定2で調製したサンプルについて粘度測定を行ったところ、角速度10rad/secで測定したときの絶対粘度が約7.1Pasecとなり、粘度が高いハイドロゲルが調製できた。このハイドロゲルをsample1とする。このサンプルの希釈溶液について平均粒径を測定したところ、580nmであった。[実施例2]1原料合成CMCNaPM250-L3000mgを水とテトラヒドロフランの1:1体積比の混合溶媒に溶解させた。この溶液に、DOPE384mg0.52mmol、WSCHCl99mg0.52mmol、およびDHBT337mg2.06mmolを加えた。反応終了後、反応溶液をエタノールに加えることにより多糖類誘導体を析出させ、ろ取した。得られた固体をエタノールで洗浄し、減圧乾燥した。得られた多糖類誘導体のDOPEによる置換度は0.76mol/糖残基であった。2ハイドロゲルの調製1で合成した多糖類誘導体20mgをそれぞれリン酸緩衝生理食塩水1980mgに溶解し、濃度1.0重量の溶液を調製した後、121°Cで20分間加熱した。3粘度測定および平均粒径測定2で調製したサンプルについて粘度測定を行ったところ、角速度10rad/secで測定したときの絶対粘度が約13.1Pasecとなり、粘度が高いハイドロゲルが調製できた。このハイドロゲルをsample2とする。このサンプルの希釈溶液について平均粒径を測定したところ、1789nmであった。[比較例1]1原料実施例1および実施例2で合成した多糖類誘導体を用いた。2ハイドロゲルの調製溶媒として水を用いて調製実施例1および実施例2で合成した多糖類誘導体20mgをそれぞれ水1980mgに溶解し、濃度1.0重量の溶液を調製した後、121°Cで20分間加熱した。3粘度測定および平均粒径測定調製したサンプルについて粘度測定を行ったところ、角速度10rad/secで測定したときの絶対粘度が、実施例1で合成した多糖類誘導体を用いたサンプルは0.1Pasec以下、実施例2で合成した多糖類誘導体を用いたサンプルは約0.3Pasecとなり、どちらもゲル化していなかった。これらのサンプルの希釈溶液について平均粒径を測定したところ、散乱強度不足になり、凝集体を形成していなかった。[実施例3]1原料実施例1および実施例2で合成した多糖類誘導体を用いた。2ハイドロゲルの調製実施例1および実施例2で合成した多糖類誘導体20mgをそれぞれリン酸緩衝生理食塩水1980mgに溶解し、濃度1.0重量の溶液を調製した後、121°Cで20分間加熱した。3長期安定性試験2で調製したサンプルについて調製直後、および40°C一ヶ月保存後の粘度測定を検討したところ、どちらのサンプルも角速度10rad/secで測定したときの絶対粘度に変化はなかった。結果を図5に示す。[比較例2]1原料CMCNaPM250-L3000mgを水とテトラヒドロフランの1:1体積比の混合溶媒に溶解させた。この溶液に、DOPE351mg0.47mmol、WSCHCl399mg2.08mmol、およびHOSu239mg2.08mmolを加えた。反応終了後、反応溶液をエタノールに加えることにより多糖類誘導体を析出させ、ろ取した。得られた固体をエタノールで洗浄し、減圧乾燥した。得られた多糖類誘導体のDOPEによる置換度は2.39mol/糖残基であった。また、同様にしてDOPEによる置換度2.79mol/糖残基の多糖類誘導体を合成した。2ハイドロゲルの調製溶媒として水を用いて調製1で合成した多糖類誘導体20mgを水1980mgに溶解し、濃度1.0重量の溶液を調製した後、121°Cで20分間加熱した。3長期安定性試験および平均粒径測定2で調製したサンプルについて調製直後、および40°C一ヶ月保存後の粘弾性を検討したところ、角速度10rad/secで測定したときの絶対粘度は大幅に変化した。DOPEによる置換度が2.39mol/糖残基の多糖類誘導体を用いて調製したハイドロゲルをsample3、DOPEによる置換度が2.79mol/糖残基の多糖類誘導体を用いて調製したハイドロゲルをsample4とした結果を図5に示す。これらのサンプルの調製直後の希釈溶液について平均粒径を測定したところ、散乱強度不足になり、凝集体を形成していなかった。[実施例4]1原料合成CMCNaP603A3000mgを水とテトラヒドロフランの1:1体積比の混合溶媒に溶解させた。この溶液に、DOPE384mg0.52mmol、WSCHCl247mg1.29mmol、およびDHBT337mg2.06mmolを加えた。反応終了後、反応溶液をエタノールに加えることにより多糖類誘導体を析出させ、ろ取した。得られた固体をエタノールで洗浄し、減圧乾燥した。得られた多糖類誘導体のDOPEによる置換度は1.30mol/糖残基であった。2ハイドロゲルの調製1で合成した多糖類誘導体20mgをリン酸緩衝生理食塩水1980mgに溶解し、濃度1.0重量の溶液を調製した後、121°Cで5分間加熱した。3フィルターろ過前後の粘度測定および平均粒径測定2で調製したサンプルについてフィルターろ過前後における粘弾性を検討したところ、フィルターろ過後も粘弾性に変化はみられなかった。結果は図6および表1に示す。このサンプルの希釈溶液について平均粒径を測定したところ、446nmであった。[比較例3]1原料実施例4で合成した多糖類誘導体を用いた。2ハイドロゲルの調製加熱処理を行わずに調製上記多糖類誘導体20mgをリン酸緩衝生理食塩水1980mgに溶解し、濃度1.0重量のハイドロゲルを調製した。3フィルターろ過前後の粘度測定および平均粒径測定2で調製したサンプルについてフィルターろ過前後における粘弾性を検討したところ、フィルターろ過前後で粘弾性が大幅に変化した。結果は図7および表1に示す。このサンプルの希釈溶液について平均粒径を測定したところ、2820nmであった。[実施例5]1原料CMCNaP603Aを用いた。2ハイドロゲル希釈溶液の調製CMCNaP603A20mgをリン酸緩衝生理食塩水1980mgに溶解し、濃度1.0重量の溶液を調製した。この溶液を121°Cで20分間加熱を行ったものと行っていないものを用意した。それぞれを100mM塩化ナトリウム水溶液で希釈し、0.05~0.02重量の溶液を調製した。3多糖類誘導体の分子量の測定加熱処理を行ったものと行っていないものについて固有粘度から粘度平均分子量を測定した。その結果、加熱処理を行ったものの粘度平均分子量は10.5万ダルトンとなり、加熱処理を行っていないものの粘度平均分子量11.5万とほぼ等しくなったことから、加熱処理により多糖類誘導体の分子量が変化しないことが分かった。[実施例6]1原料合成CMCNaPRS3000mgを水とテトラヒドロフランの1:1体積比の混合溶媒に溶解させた。この溶液に、DOPE349mg0.47mmol、WSCHCl99mg0.52mmol、およびDHBT337mg2.06mmolを加えた。反応終了後、反応溶液をエタノールに加えることにより多糖類誘導体を析出させ、ろ取した。得られた固体をエタノールで洗浄し、減圧乾燥した。得られた多糖類誘導体のDOPEによる置換度は1.57mol/糖残基であった。同様にして、1.07mol/糖の多糖類誘導体を合成した。2ハイドロゲルの調製1で合成した多糖類誘導体20mgをリン酸緩衝生理食塩水1980mgに溶解し、濃度1.0重量の溶液を調製した後、121°Cで5分間加熱した。PVDFフィルター孔径5μmにてろ過した。3フィルターろ過前後の糖濃度測定および平均粒径測定2で調製したサンプルについてフィルターろ過前後における糖濃度を検討したところ、フィルターろ過前後における被検物中の糖濃度に変化はみられなかった。結果を表2に示す。これのサンプルの希釈溶液について平均粒径を測定したところ、DOPEによる置換度が1.07mol/糖残基のサンプルは224nm、1.57mol/糖残基のサンプルは648nmであった。[実施例7]1ハイドロゲル実施例6で調製したサンプルを用いた。2フィルターろ過前後の不溶性微粒子数測定1のサンプル1mLについて、フィルターろ過前後における10μm以上、および25μm以上の不溶性微粒子数を検討した。その結果、対照物質に比べ被検物の10μm以上、および25μm以上の不溶性微粒子数は2分の1から20分の1減少した。結果を図8に示す。[実施例8]1原料合成CMCNaPRS3000mgを水とテトラヒドロフランの1:1体積比の混合溶媒に溶解させた。この溶液に、DOPE349mg0.50mmol、WSCHCl143mg0.74mmol、およびDHBT324mg1.98mmolを加えた。反応終了後、反応溶液をエタノールに加えることにより多糖類誘導体を析出させ、ろ取した。得られた固体をエタノールで洗浄し、減圧乾燥した。得られた多糖類誘導体のDOPEによる置換度は1.44mol/糖残基であった。2ハイドロゲルの調製1で合成した多糖類誘導体20mgを、200mM塩化ナトリウムを含むリン酸緩衝液1980mgに溶解し、濃度1.0重量の溶液を調製した後、121°Cで5分間加熱した。PVDFフィルター孔径5μmにてろ過し、さらに121°Cで20分間加熱した。3フィルターろ過前後の粘度測定および平均粒径測定2で調製したサンプルについてフィルターろ過前後における粘弾性を検討したところ、フィルターろ過後も角速度10rad/secで測定したときの絶対粘度に変化はみられなかった。結果は表3に示す。このサンプルの希釈溶液について平均粒径を測定したところ、620nmであった。4長期安定性試験2で調製したサンプルについて調製直後、および40°C一ヶ月保存後の粘弾性を検討したところ、角速度10rad/secで測定したときの絶対粘度に変化はなかった。結果を表3に示す。[実施例9]1原料実施例8で合成した多糖類誘導体を用いた。2ハイドロゲルの調製上記多糖類誘導体20mgを、137mM塩化ナトリウムを含むHEPES緩衝液1980mgに溶解し、濃度1.0重量の溶液を調製した後、121°Cで5分間加熱した。PVDFフィルター孔径5μmにてろ過し、さらに121°Cで20分間加熱した。3フィルターろ過前後の粘度測定および平均粒径測定2で調製したサンプルについてフィルターろ過前後における粘弾性を検討したところ、フィルターろ過後も角速度10rad/secで測定したときの絶対粘度に変化はみられなかった。結果は表3に示す。このサンプルの希釈溶液について平均粒径を測定したところ、887nmであった。4長期安定性試験2で調製したサンプルについて調製直後、および40°C一ヶ月保存後の粘弾性を検討したところ、角速度10rad/secで測定したときの絶対粘度に変化はなかった。結果を表3に示す。[比較例4]1原料実施例8で合成した多糖類誘導体を用いた。2ハイドロゲルの調製溶媒としてリン酸緩衝液を用いて調製上記多糖類誘導体20mgをリン酸緩衝液1980mgに溶解し、濃度1.0重量の溶液を調製した後、121°Cで5分間加熱した。PVDFフィルター孔径5μmにてろ過し、さらに121°Cで20分間加熱した。3粘度測定および平均粒径測定2で調製したサンプルについて粘弾性を検討したところ、角速度10rad/secで測定したときの絶対粘度が、約0.1Pasec以下となり、ゲル化していなかった。このサンプルの希釈溶液について平均粒径を測定したところ、散乱強度不足になり、凝集体を形成していなかった。[比較例5]1原料実施例9で合成した多糖類誘導体を用いた。2ハイドロゲルの調製溶媒としてHEPES緩衝液を用いて調製上記多糖類誘導体20mgをHEPES緩衝液1980mgに溶解し、濃度1.0重量の溶液を調製した後、121°Cで5分間加熱した。PVDFフィルター孔径5μmにてろ過し、さらに121°Cで20分間加熱した。3粘度測定および平均粒径測定2で調製したサンプルについて粘弾性を検討したところ、角速度10rad/secで測定したときの絶対粘度が約0.3Pasecとなり、ゲル化していなかった。このサンプルの希釈溶液について平均粒径を測定したところ、散乱強度不足になり、凝集体を形成していなかった。[参考例1]1原料実施例4で合成した多糖類誘導体を用いた。2ハイドロゲルの調製上記多糖類誘導体20mgをリン酸緩衝生理食塩水1980mgに溶解し、濃度1.0重量の溶液を調製した後、121°Cで20分間加熱することを3回繰り返した。3DLS測定2で調製したサンプルについてDLS測定を行った。結果は図9に示す。121°Cで20分間処理を1回行うと粒径分布が小さくなる方向にシフトするが、さらに同じ処理を繰り返しても粒径分布の変化は少なくなり、一定範囲に収束することがわかる。"