"微生物由来のポリヒドロキシアルカン酸結合タンパク質のN末端から20番目までのアミノ酸領域において1以上のアミノ酸が置換されてなるアミノ酸配列を有する、変異型ポリヒドロキシアルカン酸結合タンパク質。前記微生物がAeromonas属微生物である、請求項1に記載の変異型ポリヒドロキシアルカン酸結合タンパク質。配列番号1に示されるアミノ酸配列と85以上の配列同一性を示すアミノ酸配列を有する、請求項2に記載の変異型ポリヒドロキシアルカン酸結合タンパク質。前記Aeromonas属微生物由来のポリヒドロキシアルカン酸結合タンパク質のN末端から4番目のアミノ酸が置換されてなるアミノ酸配列を有する、請求項2又は3に記載の変異型ポリヒドロキシアルカン酸結合タンパク質。前記Aeromonas属微生物由来のポリヒドロキシアルカン酸結合タンパク質のN末端から4番目のアミノ酸が、アスパラギン酸を除く19種類の天然アミノ酸の一つに置換されてなるアミノ酸配列を有する、請求項4に記載の変異型ポリヒドロキシアルカン酸結合タンパク質。前記アスパラギン酸を除く19種類の天然アミノ酸が、非電荷の極性天然アミノ酸である、請求項5に記載の変異型ポリヒドロキシアルカン酸結合タンパク質。前記非電荷の極性天然アミノ酸がアスパラギンである、請求項6に記載の変異型ポリヒドロキシアルカン酸結合タンパク質。前記Aeromonas属微生物が、A.caviae、A.hydrophila、A.salmonicida、A.allosaccharophila、A.bestiarum、A.encheleia、A.enteropelogenes、A.eucrenophila、A.ichthiosmia、A.jandaei、A.media、A.popoffii、A.punctata、A.schubertti、A.sobria、又はA.trotaである、請求項2~7のいずれか一項に記載の変異型ポリヒドロキシアルカン酸結合タンパク質。前記Aeromonas属微生物が、A.caviae又はA.hydrophilaである、請求項8に記載の変異型ポリヒドロキシアルカン酸結合タンパク質。前記Aeromonas属微生物がA.caviaeである、請求項9に記載の変異型ポリヒドロキシアルカン酸結合タンパク質。請求項1~10のいずれか一項に記載の変異型ポリヒドロキシアルカン酸結合タンパク質をコードする遺伝子。ポリヒドロキシアルカン酸生産微生物において機能するプロモーター及びターミネーターと、請求項11に記載の遺伝子と、を含む、遺伝子発現カセット。請求項11に記載の遺伝子又は請求項12に記載の遺伝子発現カセットをポリヒドロキシアルカン酸生産微生物に導入して得られる形質転換微生物。前記ポリヒドロキシアルカン酸生産微生物が、Aeromonas属、Alcaligenes属、Bacillus属、Chromobacterium属、Cupriavidus属、Escherichia属、Pseudomonas属、Rhodobacter属、又は、Rhodospirillum属に属する微生物である、請求項13に記載の形質転換微生物。前記ポリヒドロキシアルカン酸生産微生物が、Aeromonascaviae、Ahydrophila、Alcaligeneslatus、Bacillusmegaterium、Chromobacteriumviolaceum、Cupriavidusnecator、Escherichiacoli、Pseudomonasaeruginosa、Pputida、Poleovorans、Rhodobactersphaeroides、又は、Rhodospirillumrubrumに属する微生物である、請求項14に記載の形質転換微生物。前記ポリヒドロキシアルカン酸生産微生物が、C4~C16のヒドロキシアルカン酸からなる群から選ばれる1以上のヒドロキシアルカン酸をモノマー単位として含むポリヒドロキシアルカン酸を生産する微生物である、請求項13~15のいずれか一項に記載の形質転換微生物。前記ポリヒドロキシアルカン酸生産微生物が、C4~C16のヒドロキシアルカン酸からなる群から選ばれる2以上のヒドロキシアルカン酸をモノマー単位として含む共重合ポリヒドロキシアルカン酸を生産する微生物である、請求項16に記載の形質転換微生物。前記ポリヒドロキシアルカン酸生産微生物がポリヒドロキシ酪酸を生産する微生物である、請求項16に記載の形質転換微生物。前記ポリヒドロキシアルカン酸生産微生物が3-ヒドロキシ酪酸をモノマー単位として含む共重合ポリヒドロキシアルカン酸を生産する微生物である、請求項17に記載の形質転換微生物。前記ポリヒドロキシアルカン酸生産微生物が、3-ヒドロキシ酪酸と3-ヒドロキシヘキサン酸をモノマー単位として含む共重合ポリヒドロキシアルカン酸を生産する微生物である、請求項19に記載の形質転換微生物。請求項13~20のいずれか一項に記載の形質転換微生物を培養してポリヒドロキシアルカン酸を発酵生産する工程を含む、ポリヒドロキシアルカン酸の製造方法。本発明は、上記現状に鑑み、PHAの工業的発酵生産において、高い生産性にてPHAを生産するとともに、複数のモノマーから構成される共重合PHAのモノマー組成比を制御することを可能にする変異型PHA結合タンパク質変異型フェイシン、及び、それを用いたPHAの製造方法を提供することを課題とする。現在までに、フェイシンはPHA生産性を向上させること、及び、PHBHの3HH組成比を高くする機能を有することが報告されているが、フェイシンの構造と、PHA生産性又はPHBHの3HH組成比との関係については十分な解析が行なわれていない。フェイシンのカルボキシ末端には疎水性アミノ酸を含む領域が存在しており、この領域でPHA顆粒に結合していると考えられている。また、PHA顆粒にはフェイシン以外にも、PHA合成酵素やデポリメラーゼ、PhaR等が結合しており、PHA生合成系分解系において複雑な相互作用をしていると推定されているMicrobiology,vol151,8252005。本発明者らは、これらの相互作用にフェイシンタンパク質の構造、特にアミノ末端領域が関与していると考え、鋭意研究を行なった。その結果、フェイシンのアミノ末端領域の改変体がPHA生産性を向上させ、PHBHの3HH組成比を高くすることを見出し、本研究を完成するに至った。すなわち本発明は、微生物由来のポリヒドロキシアルカン酸結合タンパク質のN末端から20番目までのアミノ酸領域において1以上のアミノ酸が置換されてなるアミノ酸配列を有する、変異型ポリヒドロキシアルカン酸結合タンパク質である。また本発明は、前記変異型ポリヒドロキシアルカン酸結合タンパク質をコードする遺伝子、又は、前記遺伝子に加えて、ポリヒドロキシアルカン酸生産微生物において機能するプロモーター及びターミネーターを含む、遺伝子発現カセットでもある。さらに本発明は、前記遺伝子又は前記遺伝子発現カセットをポリヒドロキシアルカン酸生産微生物に導入して得られる形質転換微生物でもある。さらにまた本発明は、前記形質転換微生物を培養してポリヒドロキシアルカン酸を発酵生産する工程を含む、ポリヒドロキシアルカン酸の製造方法でもある。本発明によれば、PHA生産を工業的規模で生産性よく実施することが可能となる。また、共重合PHAのモノマー組成比を広範囲に調節でき、特に軟質PHAを容易に製造することができる。以下、本発明について詳細に説明する。本発明におけるポリヒドロキシアルカン酸PHAは以下の一般式で表される。式中、R1及びR2は炭素数1以上13以下であるアルキル基を表し、互いに同一であっても異なっていても良い。m及びnは該PHAのモノマー単位数を表し、3種以上のモノマー単位から構成される場合はモノマー単位数を増やすことができる。で表される3-ヒドロキシアルカン酸をモノマー単位として含む重合体単独重合体または共重合体である。PHAは、R1及びR2がともにメチル基のホモポリマーであるPHBであってもよい。または、モノマー単位が3-ヒドロキシ酪酸、3-ヒドロキシ吉草酸、3-ヒドロキシヘキサン酸、3-ヒドロキシヘプタン酸、3-ヒドロキシオクタン酸、3-ヒドロキシノナン酸、3-ヒドロキシデカン酸、3-ヒドロキシウンデカン酸、3-ヒドロキシドデカン酸、3-ヒドキシトリデカン酸、3-ヒドロキシテトラデカン酸、3-ヒドロキシペンタデカン酸、及び3-ヒドロキシヘキサデカン酸からなる群より選択されるモノマー単位の2種以上から構成される共重合PHAであってもよい。特に、3-ヒドロキシ酪酸をモノマー単位として含む共重合PHAが好ましく、3-ヒドロキシ酪酸と3-ヒドロキシヘキサン酸をモノマー単位として含む共重合PHAがより好ましい。本発明における微生物由来のポリヒドロキシアルカン酸結合タンパク質フェイシンは、PHAを生産する微生物由来であればどのような微生物由来のフェイシンでもよい。具体的には、C.necator、Paracoccusdenitrificans、Rhodococcusruber、Pseudomonassp.の他、A.caviae、A.hydrophila、A.salmonicida、A.allosaccharophila、A.bestiarum、A.encheleia、A.enteropelogenes、A.eucrenophila、A.ichthiosmia、A.jandaei、A.media、A.popoffii、A.punctata、A.schubertti、A.sobria、A.trota等のAeromonas属由来のフェイシンが挙げられる。好ましくはA.caviae、又は、A.hydrophila由来のフェイシンであり、より好ましくは、A.caviae由来のフェイシンである。A.hydrophila由来のフェイシンのアミノ酸配列については、A.caviae由来のフェイシンのアミノ酸配列と同じであることが報告されている非特許文献7。フェイシン遺伝子のDNA配列情報は、科学論文や日本DNAデータバンクDDBJなどより入手することができる。当該フェイシンを有する微生物より調製した染色体DNAを鋳型にし、当該DNA配列情報に基づいて作製したPCRプライマーを用いてPCRを行うことでフェイシン遺伝子をクローニングすることができる。一例として、A.caviaeのフェイシンDNA配列配列番号2はFukui等,J.Bacteriol.,vol179,48211997にORF1として報告されていることから、当該DNA配列に基づいてPCRプライマーを作成し、A.caviaeFA440の染色体DNAを鋳型にしたPCRによってフェイシン遺伝子をクローニングすることができる。フェイシン遺伝子への変異導入は、一般的な方法を適用することができる。一例として当該遺伝子に対してランダムプライマーを用いた変異導入法、部位特異的変異を有するプライマーを用いた変異導入法などを利用することができる。これらの方法を用いることによりフェイシンを構成するいずれのアミノ酸に対しても効率よく変異を導入することができる。フェイシンに対する変異導入はアミノ末端領域に行われ、具体的には、アミノ末端N末端から20番目までのアミノ酸領域において1以上のアミノ酸が置換される。好ましくはN末端から4番目のアミノ酸に対して行われる。一例として、A.caviae由来のフェイシンのアミノ酸配列配列番号1のうちN末端から4番目のアミノ酸はアスパラギン酸であるが、このアスパラギン酸を、アスパラギン酸以外の19種類のアミノ酸に置換することができる。好ましくは、N末端から4番目のアスパラギン酸を、極性だが電荷のない天然アミノ酸セリン、スレオニン、システイン、チロシン、アスパラギン、グルタミンに加え、分子内でアミノ基カルボキシル基の占める割合の大きいグリシンを含める。の一つに置換することができる。より好ましくは、N末端から4番目のアスパラギン酸を、アスパラギンに置換することができる。A.caviae由来のフェイシンのアミノ酸配列においてN末端から4番目のアミノ酸がアスパラギン酸からアスパラギンに置換されてなるアミノ酸配列を配列番号3に示す。フェイシンに対する変異導入は、N末端から4番目のアミノ酸のみに限定されない。本発明の効果が発揮される限り、他のアミノ酸残基において変異が導入されていてもよい。この時、本発明の変異型フェイシンのアミノ酸配列は、配列番号1に示されるアミノ酸配列A.caviae由来の野生型フェイシンのアミノ酸配列を表すと85以上の配列同一性を示すことが好ましい。より好ましくは90以上であり、さらに好ましくは95以上であり、さらに好ましくは97以上である。PHA生産微生物において変異型フェイシンを発現させるために、変異型フェイシン遺伝子の上流にプロモーター、下流にターミネーターを連結して変異型フェイシン遺伝子発現カセットを構築することが好ましい。プロモーターとしては当該PHA生産微生物において機能するものであればどのようなプロモーターでもよく、一例として、ラクトースオペロンプロモーター、λファージプロモーター、A.caviae由来のPHAオペロンプロモーター、C.necator由来のPHAオペロンプロモーターなどを利用することができる。また、ターミネーターとしては当該PHA生産微生物において機能するものであればどのようなターミネーターでもよく、一例として、rrnターミネーター、A.caviae由来のPHAオペロンターミネーター、C.necator由来のPHAオペロンターミネーターなどを利用することができる。上記のように作製した変異型フェイシン遺伝子発現カセットは、種々の形質転換法を用いてPHA生産微生物に形質転換することができる。PHA生産微生物としては、例えば、Aeromonas属、Alcaligenes属、Bacillus属、Chromobacterium属、Cupriavidus属、Escherichia属、Pseudomonas属、Rhodobacter属、又は、Rhodospirillum属に属する微生物が挙げられる。より具体的には、Aeromonascaviae、Ahydrophila、Alcaligeneslatus、Bacillusmegaterium、Chromobacteriumviolaceum、Cupriavidusnecator、Escherichiacoli、Pseudomonasaeruginosa、Pputida、Poleovorans、Rhodobactersphaeroides、又は、Rhodospirillumrubrumに属する微生物が挙げられる。このうち、C.necator、A.caviae、A.hydrophila、Pputida、Pseudonasaerginosa等は、本来PHAを生産する微生物である。また、E.coliのように本来PHAを生産できない微生物にPHA合成系遺伝子群等を形質転換することでPHAを生産可能となった微生物も利用することができる。更に、本来PHAを生産する微生物のPHA合成酵素遺伝子が破壊され、且つ他の微生物由来のPHA合成酵素遺伝子を形質転換することでPHAを生産可能となった微生物も利用することができる。変異型フェイシン遺伝子発現カセットの前記PHA生産微生物への形質転換には、一般的な種々の方法を利用することができる。自律増殖可能なプラスミドベクターを用いる場合、当該ベクターに当該発現カセットを挿入することで発現プラスミドを構築し、電気導入法やカルシウム法などにより発現プラスミドをPHA生産微生物に形質転換することができる。例えば、大腸菌で自律増殖可能なプラスミドベクターとしてpBBR1MCS-2を用い、当該ベクターにA.caviae由来の変異型フェイシン及びポリエステル合成系遺伝子群発現カセットを組み込んだ発現プラスミドを大腸菌に形質転換し、形質転換微生物を取得できる。また、本発現プラスミドはC.necatorにおいて自律増殖することができることから、C.necator由来の宿主に形質転換することもできる。また、当該発現カセットをPHA生産微生物の染色体上に組み込むことで形質転換することもできる。具体的には、発現カセットの上流と下流にPHA生産微生物のゲノム配列の一部を連結し、当該構築物を電気導入法やカルシウム法などにより形質転換することで当該微生物の染色体上に組み込むことができる。更に、本来PHAを生産する微生物は、当該微生物由来のフェイシン遺伝子を保有している。このため、形質転換する変異型フェイシン遺伝子を用いて当該微生物のフェイシン遺伝子を破壊置換することが好ましい。発現カセットの染色体上への挿入には、種々の抗生物質耐性遺伝子や糖代謝に関わるsacB遺伝子などの適切な選択マーカーが種々準備されており、それらを適切に組み合わせて用いることができる。上記形質転換微生物を用いてポリヒドロキシアルカン酸を発酵生産することで、変異型フェイシンの効果PHA生産性向上、共重合比の制御を明らかにすることができる。形質転換微生物の培養では、炭素源、炭素源以外の栄養源である窒素源、無機塩類、そのほかの有機栄養源を含む培地を用いて、当該形質転換微生物を培養することが好ましい。炭素源としては、糖類、油脂類、脂肪酸類などが好ましく、より好ましくはブドウ糖、蔗糖、植物油脂、植物由来脂肪酸類である。窒素源としては、例えばアンモニア、塩化アンモニウム、硫酸アンモニウム、リン酸アンモニウム等のアンモニウム塩の他、ペプトン、肉エキス、酵母エキス等が挙げられる。無機塩類としては、例えばリン酸2水素カリウム、リン酸水素2ナトリウム、リン酸マグネシウム、硫酸マグネシウム、塩化ナトリウム等が挙げられる。そのほかの有機栄養源としては、例えばグリシン、アラニン、セリン、スレオニン、プロリン等のアミノ酸、ビタミンB1、ビタミンB12、ビタミンC等のビタミン等が挙げられる。また、培養液中に、発現プラスミドに存在する抗生物質耐性遺伝子に対応する抗生物質アンピシリン、カナマイシン等を添加しても良い。本発明において、形質転換微生物の菌体からのPHAホモポリマー、共重合ポリエステルの回収は、特に限定されないが、例えば次のような方法により行うことができる。培養終了後、培養液から遠心分離機等で菌体を分離し、その菌体を蒸留水およびメタノール等により洗浄し、乾燥させる。この乾燥菌体から、クロロホルム等の有機溶剤を用いてPHAを抽出する。このPHAを含んだ有機溶剤溶液から、濾過等によって菌体成分を除去し、その濾液にヘキサン等の貧溶媒を加えてPHAを沈殿させる。さらに、濾過や遠心分離によって上澄み液を除去し、乾燥させてPHAを回収する。得られたPHAの重量平均分子量MwはGPCを用いて測定することができ、また得られたPHAが共重合ポリエステルの場合には、その組成の分析をガスクロマトグラフ法や核磁気共鳴法等により行うことができる。例えば共重合ポリエステルがPHBHの場合、3HB/3HH組成比を決定することができる。本発明により、PHAの工業的発酵生産により高い生産性にてPHAを生産する方法が提供され、複数のモノマーから構成される共重合PHAのモノマー組成比を制御することで硬質から軟質に至る物性を示すPHAを製造する方法が提供される。以下、実施例により本発明を具体的に説明するが、本発明は、これらの実施例によりその技術的範囲を限定されるものではない。なお一般的な遺伝子操作は、MolecularCloningColdSpringHarborLaboratoryPress、1989に記載されている方法等を用いることができる。また、遺伝子操作に使用する酵素、クローニング宿主等は、市場の供給者から購入し、その取扱説明書に従い使用することができる。なお、酵素としては、遺伝子操作に使用できるものであれば特に限定されない。実施例1A.caviaeのフェイシンPhaPAC変異体D4Nの取得1pBBR1phaPCJAcABRe本プラスミドは、E.coliを宿主とした糖からのPHBホモポリマー合成および脂肪酸からのPHBH合成の両方に利用できるプラスミドである。Kichise等によって作製されたプラスミドpBSEE32phbABKichise等,Appl.Env.Microbiol.,vol68,24112002を制限酵素HindIIIおよびXbaIで処理することで調製した発現ユニットphaPCJAcABReを、制限酵素HindIIIおよびXbaIで切断した広域ベクターpBBR1MCS-2に挿入することで作製した。当該発現ユニットの上流にはA.caviae由来のプロモーター、および、E.coliでより転写活性の高いlacプロモーターが配置されている。その構造を図1に示す。2pBBR1phaPCJAcABReD171Xの作製pBBR1phaPCJAcABReのA.caviae由来phaCPHA合成酵素遺伝子のD171位171番目のアスパラギン酸に対してPCRを用いた部位特異的ランダム変異導入NucleicAcidsRes.,vol19,27851991を行った後、BKLキットタカラバイオ製による平衡末端化、リン酸化及び自己ライゲーション反応を行った。PCRの条件を図2に示す。次に自己ライゲーション反応液をE.coliJM109またはE.coliLS5218のコンピテントセルに形質転換することで種々のD171位の変異体を取得した。導入された変異は、当該プラスミドの全長又はphaC、phaPの塩基配列を決定することで解析した。その結果、phaCのD171がLロイシンに置換されたプラスミドpBBR1phaPCJAcABReD171Lを取得した比較例。同時に、phaCのD171のLへの置換に加えて、PhaPのD44番目のアスパラギン酸がNアスパラギンに置換されたプラスミドpBBR1phaPD4NCJAcABReD171Lも取得した。同プラスミドには同変異に加えてmobプラスミド伝達に関与する遺伝子のR177177番目のアルギニンがCシステインに置換され、L301301番目のロイシンにはサイレント変異が導入されていた。PCRの条件を図2に示す。野生型PhaPのアミノ酸配列を配列番号1に、D4がNに置換された変異型PhaPのアミノ酸配列を配列番号3に示す。ベクター部分の変異の影響を避けるため、phaCD171LおよびPhaPD4Nの変異を有する発現ユニットphaPD4NCJAcABReD171Lを前述の方法を用いてpBBR1MCS-2に再挿入し、pBBR1phaPD4NCJAcABReD171Lを作製した実施例。さらに、phaCが野生型WTでかつPhaPのD4がNに置換されたプラスミドpBBR1phaPD4NCJAcABReWTを作製した実施例。本プラスミドは、pBBR1phaPD4NCJAcABReD171Lを制限酵素KpnIとSgfIで処理し、同酵素で処理したpBBR1phaPCJAcABReベクターに挿入することで構築した。実施例2大腸菌を宿主としたフェイシン変異体phaPD4NのPHA生産に与える効果1形質転換体の培養方法実施例1において作製した4種類のプラスミドpBBR1phaPCJAcABRe、pBBR1phaPCJAcABReD171L、pBBR1phaPD4NCJAcABReWT、pBBR1phaPD4NCJAcABReD171LをE.coliLS5218に形質転換し、カナマイシン50mg/Lを含むLB寒天培地に塗り広げ、37°Cで一晩培養することでそれぞれの形質転換体を培養した。プレート培地に形成された単一コロニー形質転換体をLB液体培地に植菌し、37°C、150回/minで16時間振盪培養した前培養。次に500ml振とうフラスコに、単一炭素源としてドデカン酸ナトリウム2.5g/Lを含む100mlのM9液体培地表1を入れ、前培養液1mlを植菌し、37°C、130回/minで72時間振とう培養した本培養。なお、抗生物質としてカナマイシン50mg/Lを加えた。また、炭素源であるドデカン酸ナトリウムは水に対する溶解度が低く、これを補うために非イオン性界面活性剤BRIJ35ポリオキシエチレンラウリルエーテルを0.4vol加えた。2集菌方法上記1の培養液を250ml遠沈管に移し、振とうフラスコ内を適量のヘキサンで1回、純水で3回すすいだ。この洗液も遠沈管に加えて激しく撹拌した後、4°C、6000rpmで10min遠心分離し、上清を除いた。菌体ペレットを適量の純水で懸濁して激しく撹拌した後、4°C、6000rpmで10min遠心分離し、上清を除いた。ペレットを適量の純水5ml未満に懸濁し、風袋を秤量済みの5ml集菌チューブに移して凍結乾燥した。乾燥後のチューブを秤量することで乾燥菌体重量を得た。3分析方法3-1ガスクロマトグラフィーGC培養菌体が合成したPHAの含有率とモノマー組成比は、ガスクロマトグラフィーGCを用いて内部標準法により求めた。この方法では、メタノリシス反応により生じた乾燥菌体内PHA分解物であるメチルエステルを測定する。乾燥菌体をネジ蓋付き試験管に約10mg採り、15硫酸メタノール溶液2mlとクロロホルム2mlを加え、途中で数回激しく撹拌しながら100°Cで140min加熱した。室温まで放冷した後、超純水1mlを加えて激しく混合し、一晩放置した。二層分離したサンプル溶液の下層クロロホルム層をパスツールピペットで採り、φ0.45μmポリフッ化ビニリデンPVDFフィルターAdvantec製でろ過した。1.5mlバイアル管にこのろ液と0.1オクタン酸メチル-クロロホルム溶液を500μlずつ加え、8mmポリテトラフルオロエチレンPTFE/シリコンセプタムを挟んで蓋をした。この溶液をサンプルとした。GC測定は、以下の条件下で行った。GC分析装置GC装置:ガスクロマトグラフGC-14B島津製作所製キャピラリーカラム:100メチルポリシロキサン無極性カラム1010-11143架橋タイプ、内径0.25mm×30m、膜厚0.4μmジーエルサイエンス製検出器:水素炎イオン化検出器FIDオートインジェクタ:AOC-20iオートインジェクタ221-44527-30島津製作所製オートサンプラ:AOC-20sオートサンプラ221-44880-30島津製作所製解析装置:クロマトパックC-R7Aplus島津製作所製GC測定条件GC測定条件を、表2および表3に示す。FIDにより検出した各保持時間のピークの積分値から、PHA菌体内含有率およびモノマー組成比を決定した。GC測定結果の解析は以下の手順で行った。GC測定の結果、各モノマーに対応するメチルエステルa、b、cモノマーユニット数に対応が検出されたとき、その積分値をA、B,Cとし、対応する補正係数相対感度の逆数をX、Y、Zとすると、aのモル分率は次式から求められる。なお、3HBの値で規格化された各補正係数を表4に示す。内部標準物質であるオクタン酸メチルのピークの積分値をS、サンプルに用いた乾燥菌体の重量をmmgとすると、PHA菌体内含有率Pwtは以下の式より算出できる。ここでKはPHBを用いて作成した検量線から決定した定数で、本実施例では次式よりK値を5.8とした。フェイシン変異体の培養結果を表5に示す。表中のDCW乾燥菌体重量、PHA含量および3HH組成比に関する各数値は、平均値±標準偏差である。この結果より、phaCのD171L変異の有無に関わらず、phaPのD4N変異体においてPHAPHBH含量および3HH組成比が大きく向上していることが明らかになった。フェイシン変異体D4Xの作製pBBR1phaPCJAcABReのphaPのD4位4番目のアスパラギン酸に対してPCRを用いた部位特異的ランダム変異導入NucleicAcidsRes.,vol19,27851991を行った後、BKLキットタカラバイオ製による平衡末端化、リン酸化及び自己ライゲーション反応を行った。PCRの条件を図3に示す。次に自己ライゲーション反応液をE.coliJM109またはE.coliLS5218のコンピテントセルに形質転換することで種々のD171位の変異体を取得した。導入された変異は、当該プラスミドのphaPの塩基配列を決定することで解析した。その結果、phaPの4番目のアスパラギン酸に対して、アスパラギン酸以外の19種類の天然アミノ酸に置換された変異体を作製することができた。"