下記式I:式中、Brは75Br、76Br、77Br、および80Brからなる群から選択される放射性臭素を示し;R1は水素またはアルキルを示す。で表される化合物およびその光学異性体、ならびに、下記式II:式中、BrおよびR1は上記と同義を示し、R2は水素またはアルキルを示す。で表される化合物およびその光学異性体からなる群から選択される化合物、または医薬的に許容されるその塩。前記式Iで表される化合物であって、式IにおいてBrが76Brであり、かつR1が水素である、請求項1記載の化合物、または医薬的に許容されるその塩。前記式IIで表される化合物であって、式IIにおいてBrが76Brであり、R1が水素であり、かつR2がメチルである、請求項1記載の化合物、または医薬的に許容されるその塩。請求項1~3のいずれか1項記載の化合物または医薬的に許容されるその塩を放射性トレーサーとして含有する、PET用医薬組成物。機能性精神疾患の診断用である、請求項4記載の医薬組成物。上記のように働き盛りの世代の死因の多くがうつ病などの機能性精神疾患に関連しているため、実際の患者を用いてその病態解明および治療方法の開発を可能とするNET分子イメージングプローブの開発は、社会的意義が高く、また医療経済効果の観点からも重要である。そのため、上述したような既存のプローブが抱える問題点を克服する新規プローブの開発は大きな価値を有する。本発明はそのようなプローブとして利用され得る化合物等を提供する。上述したような従来技術の問題点の解決策として、本発明者らは、β線を放出する放射性臭素、特にBr76の利用に想到した。Br76はβ線を放出し、半減期が16時間と比較的長い核種である。本発明者らは、この核種を用いることにより、半減期が短い故の解析の困難性を克服し、さらにこの核種をベンゼン環に直接導入することにより、生体内で脱離し難い構造を構築できると考えた。そのような考えに基づいて、NETへの選択的な結合が報告されているレボキセチンreboxetineを母体化合物とする薬剤設計を行った。本発明者らは、そのようにして設計されたプローブが、半減期が長く、NETに対する高い親和性および選択性を有し、体内分布動態に優れている等、PET用の分子イメージングプローブ、特に機能性精神疾患診断用のプローブとして優れた特性を有することを確認し、本発明を完成させた。本発明はすなわち、以下を提供する。[1]下記式I:式中、Brは75Br、76Br、77Br、および80Brからなる群から選択される放射性臭素を示し;R1は水素またはアルキルを示す。で表される化合物およびその光学異性体、ならびに、下記式II:式中、BrおよびR1は上記と同義を示し、R2は水素またはアルキルを示す。で表される化合物およびその光学異性体からなる群から選択される化合物、または医薬的に許容されるその塩。[2]前記式Iで表される化合物であって、式IにおいてBrが76Brであり、かつR1が水素である、上記[1]記載の化合物、または医薬的に許容されるその塩。[3]前記式IIで表される化合物であって、式IIにおいてBrが76Brであり、R1が水素であり、かつR2がメチルである、上記[1]記載の化合物、または医薬的に許容されるその塩。[4]上記[1]~[3]のいずれか1つに記載の化合物または医薬的に許容されるその塩を放射性トレーサーとして含有する、PET用医薬組成物。[5]機能性精神疾患の診断用である、上記[4]記載の医薬組成物。上記[1]に記載の化合物またはその塩以下、これらを総称して本発明の化合物ともいうは、脳へ取り込まれやすい性質を有しており、かつ、NETに対する高い結合能および選択性を有している。また、用いる放射性核種の半減期が長いため、PETにおいて長期間の撮像が可能である。そのため、本発明の化合物を含有する医薬組成物は、PET用のNETイメージング薬剤として有用である。以下、本発明の化合物、および、該化合物を含有するPET用医薬組成物について詳細に説明する。本発明の化合物は、下記式I:式中、Brは75Br、76Br、77Br、および80Brからなる群から選択される放射性臭素を示し;R1は水素またはアルキルを示す。で表されるポジトロン放出性2ベンジルモルホリン類である化合物、および、下記式II:式中、BrおよびR1は上記と同義を示し、R2は水素またはアルキルを示す。で表されるポジトロン放出性R3-3-フェニルプロパンアミン類、およびそれらの光学異性体、ならびに医薬的に許容されるそれらの塩を含む。本発明の化合物は、後述する実施例等に示されるように、NETに対する高い親和性および選択性を有し、投与後に体内でNETを発現する組織に高い集積性を示す等、特に機能性精神疾患および脳機能の診断や治療における利用に有利な特性を有する。そのため、本発明の化合物は、PET用の放射性トレーサー等として好適に使用され得る。本明細書においてPETポジトロン放出断層撮影法とは、陽電子の検出を利用したコンピュータによる断層撮影技術をいう。PET診断においては、陽電子反β崩壊する核種で標識された化合物放射性トレーサーを含む薬剤が対象に投与される。生体例:人体内に投与された放射性トレーサーから放出されたβ線は放出された位置の近傍で電子と対消滅し、その際、互いに正反対の運動量を有する2個の光子γ線が放出される。PETでは、そのようにして放出される多数のγ線ペアを検出することにより対消滅の位置に関する情報を集積し、該情報をコンピュータで処理することによって断層撮影像が生成される。従って、本明細書においてPET用の放射性トレーサーとは、陽電子反β崩壊する核種で標識された化合物であって、PET診断の際に対象とする生体に投与されると生体内で崩壊して陽電子を放出することにより、PET装置によって該化合物の生体内での分布を決定するために利用され得る化合物を意味する。なお、本明細書において、放射性トレーサーはイメージングプローブまたは単にプローブと同義で用いられている。上記放射性臭素としては、75Br、76Br、77Br、80Br、80mBr、82Brからなる群から選択されるいずれであっても良いが、PET用の放射性トレーサーとして使用される場合の半減期の長さ、放出されるエネルギー等の観点から、特に好ましくは76Brである。放射性臭素の製造はサイクロトロンを用いて、公知の方法により行うことができる。なお、本発明で用いられる放射性臭素は、従来のPET用放射性トレーサーで使用されている放射性物質例:C11、F18よりも長い半減期を有するとはいえ、その半減期の長さには限りがある例:75Brでは967min76Brでは162hr77Brでは570hr80Brでは177min80mBrでは44hr82Brでは353hr。そのため、該放射性臭素は、好ましくは病院内に設置された医療用小型サイクロトロン等を用いて製造される。式Iまたは式IIにおけるR1およびR2はそれぞれ同一または異なって、水素またはアルキルを示す。より具体的には、R1およびR2は、好ましくは水素または炭素数1~6のアルキル例えば、メチル、エチル、プロピル、イソプロピル、ブチル、sec-ブチル、イソブチル、tert-ブチル、ペンチル、ヘキシル等であり、より好ましくは水素または炭素数1~3のアルキル例えば、メチルまたはエチルであり、さらにより好ましくは水素またはメチルである。R1として特に好ましくは水素であり、一方R2として特に好ましくはメチルである。すなわち、NETに対する親和性の観点等から、本発明の化合物として特に好ましいものとしては、以下に限定されないが、R1が水素である式Iの化合物、および、R1が水素、かつR2がメチルである式IIの化合物、ならびにそれらの塩を挙げることができる。上記医薬的に許容される塩は、本発明の所望される薬理学的な活性を有するものであれば特に制限されない。医薬的に許容される塩として具体的には例えば、塩酸、臭化水素酸、硫酸、リン酸、硝酸などの無機酸の付加塩、酢酸、コハク酸、リンゴ酸、酒石酸、クエン酸、マレイン酸、フマル酸、メタンスルホン酸、p-トルエンスルホン酸などの有機酸の付加塩等が挙げられる。本発明の化合物は、慣用の合成方法を利用して合成することができる。本発明の化合物の合成に有用な材料は、商業的に入手可能であるか、または周知の合成方法により調製することができる。具体的には本発明の化合物は、例えばR1が水素である上記式Iの化合物の場合、例えば、2benzylmorpholineIPBMともいうにおいてヨウ素を適当な放射性臭素に置換することによって合成することができる。ここでIPBMは下記式III:の化学式を有する化合物である。IPBMは、例えば、NKanegawaetalEuropeanJournalofNuclearMedicineandMolecularImagingVol33pp639647の教示に従って合成することができる。IPBMにおけるヨウ素の臭素への置換は、例えばLoc’hetalNuclearMedicineandBiologyVol21pp4955に記載された方法に基づいて行うことができる。具体的には後述の実施例等に記載されている方法等によって行うことができるが、その手順の一例を簡潔に述べれば以下の通りである。すなわち、所望の放射性臭素を含有する超純水をバイアルに入れ、バイアル内を窒素ガスで充満させた状態で110°Cに熱し、超純水を蒸発させる。そのバイアル内に、IPBMを含有するエタノール溶液、CuSO45H2Oおよび2SO4を加える。バイアル内を窒素ガスで充満させた状態で140°Cに熱し、バイアル内を真空状態にして水分を完全に蒸発させる。140°Cで1時間反応させる。また、R1がアルキルである上記式Iの化合物についても、当業者は、R1が水素である場合に上述した方法に準じて、上記NKanegawaetalの教示等に基づいてアルキル基が導入された化合物を合成することができる。一方、上記式IIの化合物についても、BPBMと同様に、ヨウ素前駆体を合成し、ヨウ素-放射性臭素交換反応を行うことで合成することができる。ヨウ素前駆体の合成は、例えば、YKiyonoetalNuclearMedicineandBiologyVol30pp697706に記載の方法に従って行うことができ、ヨウ素-放射性臭素交換反応は、例えば、Loc’hetalNuclearMedicineandBiologyVol21pp4955に記載の方法に従って行うことができる。上記のようにして得られた本発明の化合物は、精製されることが好ましい。精製は、高速液体カラムクロマトグラフィー等の公知の手段によって行うことができる。本発明はまた、本発明の化合物を放射性トレーサーとして含有するPET用医薬組成物以下、本発明の医薬組成物ともいうを提供する。本発明の医薬組成物は、本発明の化合物以外に、必要に応じて、通常医薬製剤に用いられる担体例えば、溶解液、無機塩、pH調整剤、賦形剤、安定化剤、等張化剤等等が含まれていてもよい。本発明の医薬組成物は、注射剤として用いられることが好ましい。注射剤として用いる場合、通常、本発明の化合物を適当な溶媒例:生理食塩水に溶解させて投与する。注射剤における本発明の化合物の含量は、投与対象に対して投与した場合に、PETでの撮像を可能とするに十分な量であれば特に制限されない。具体的な投与量は、投与対象の体重、標的部位等の種々の要因に依存して変化し得るが、例えば37MBq~740MBq、好ましくは111MBq~370MBqである。本発明の医薬組成物は、PETを用いた生体機能障害またはNETを発現する腫瘍の診断等のために好適に用いられる。上記生体機能としては、NETを発現する任意の臓器例:肺、心臓、副腎、小腸、大腸、腎臓、脳の各部位等が有する任意の生体機能であり得、好ましくは精神神経機能である。NETの変化する精神神経機能障害としては、例えば、気分障害、不安障害、発達障害等が挙げられる。以下に実施例等を示して本発明をより具体的に説明するが、本発明の範囲は以下の実施例等に限定されない。合成例1:77BrBPBMの合成および精製Br77の製造および抽出Br76の半減期は約16時間と基礎実験を行うには短く、更にエネルギーの高い放射線を放出するために検討中の被爆の危険性があることなどから、化学的性質が同じで半減期が長く、エネルギーが低い臭素の放射性同位体Br77を本検討では用いた。Br76およびBr77の性質を以下の表1および表2にそれぞれ示す。77BrBPBMの標識合成PET用分子イメージングプローブのための母体化合物としては、選択的NET阻害剤であるReboxetineを選択し、phenoxy基2位の位置に放射性臭素76を導入した2benzylmorpholineを設計した。該母体化合物のフェノキシ基の2位への置換基の導入はNETへの結合に影響を与えないという発明者らの以前の報告NKanegawaetalEuropeanJournalofNuclearMedicineandMolecularImagingVol33pp639647を元に、Br76の導入位置はフェノキシ基の2位とした。Reboxetineおよび76BrIPBMの化学式はそれぞれ以下の通りである。上記で超純水を用いて抽出したBr77を使用した77BrBPBMを得るために標識合成実験を行った。標識合成経路は以下の通りである。合成は以下の手順で行った。Br77超純水をバイアルに入れ、バイアル内を窒素ガスで充満させた状態で110°Cに熱し、超純水を蒸発させた。超純水を蒸発させたバイアルに、溶液AIPBMを溶質、エタノールを溶媒とする溶液、触媒Aと、触媒Bを入れた。バイアル内を窒素ガスで充満させた状態で140°Cに熱し、水分を蒸発させた。バイアル内を真空状態にし、完全に水分を蒸発させた。140°Cで1時間反応させ、400μlのアセトニトリル溶液400μlに溶解させた。結果はHPLC水37、TLCで調べ、その結果を非放射性BPBMの結果と比較検討することで評価した。図1にHPLCでの合成物の測定結果、図2にHPLCでの非放射性BPBMの測定結果を示す。また、表3にはTLCでの合成物の測定結果と、非放射性BPBMの測定結果を示す。図1および図2の溶出時間が一致しており、TLCの結果も同様に表3に示した合成物のRf値と、非放射性BPBMのRf値との間に有意差が認められなかった。従って、本標識合成法により77BrBPBMの標識合成を達成することができた。77BrBPBMの精製上記の生成物から、放射能検出器付きのHPLCを使用して77BrBPBMの分取を行った。この時、HPLCで検出される非放射性BPBMの溶出時間は事前に確認している。精製は以下の通りに行った。上記で得られた、目的合成物を含む溶液を放射能検出器付きのHPLC水3565にインジェクションした。事前に調べた非放射性BPBMの溶出時間と同じ時間に検出される放射性画分を分取した。分取した放射性画分が77BrBPBMであるか確認するために、放射能検出器付きのHPLC水37で分析した。分析精度を高めるためにTLCで更に分析した。分析後、精製できていることが確認できれば、蒸発乾固した後にエタノールを添加、アルミホイルで77BrBPBMの入っている容器を包み、4°Cで保存した。HPLCを用いて分取中の反応溶液のチャートを図3に、分取した77BrBPBMのHPLCでの分析結果を図4に、TLCでの分析結果を図5に示す。図3の丸で囲った部分を分取した。図4より、検出されるピークが一つであったことから、77BrBPBM以外の不純物がなく精製できていることが証明された。更に、図5においてもピークが一つであることが確認できた為、高純度の77BrBPBMが精製できたことが確認できた。精製によって得られた77BrBPBMの放射化学的純度は449±50であり、放射化学的収率は990という結果が得られた。試験例1:77BrBPBMのオクタノール水分配係数の測定合成した77BrBPBMが脳に取り込まれやすいかどうかを、その脂溶性を求めることで判断できる。一般的にオクタノール水分配係数15~25が、脳に取り込まれやすい脂溶性の指標とされている。そこで文献YKiyonoetalNuclearMedicineandBiologyVol31pp147153に記載された実験方法を参考にし、下記式:から算出される77BrBPBMのオクタノール水分配係数を求める実験を行った。実験手順は以下の通りである。チューブに20mlずつの1octanolと01Mのリン酸緩衝液を入れて撹拌し、室温で一晩静置した。別のチューブに上記チューブの上層にある1octanolを3ml、新しい01Mのリン酸緩衝液を3ml、77BrBPBMを2μl入れた。1分間×3セット撹拌し、室温で20分間静置した。さらに、1分間×3セット撹拌し、室温で20分間静置するという処理を3セット繰り返し、1000×gで5分間遠心分離した。上層にある1octanolを別のチューブに回収し、下層にあるリン酸緩衝液と分離した。各々500μlずつ回収し、γカウンタを用いて放射能を測定した。その結果、合成した77BrBPBMのオクタノール水分配係数が228±003となり、77BrBPBMは脳へ取り込まれやすい性質を有することが認められた。試験例2:77BrBPBMのNETに対する親和性実験77BrBPBMのNETに対する親和性は、文献NKanegawaetalEuropeanJournalofNuclearMedicineandMolecularImagingVol33pp639647に記載された実験方法を参考にして、大脳皮質粗シナプス膜画分への3HNisoxetineの結合に対する阻害の程度より評価した。なお、3HNisoxetineはNETに対する特異的な結合能を持つことが知られている化合物である。ラット大脳皮質粗シナプス画分の調製オスのSpragueDawleyRatの脳を摘出し、大脳皮質部分の粗シナプス膜画分を調製した。方法を下記に示す。大脳皮質部分に30mlの氷冷した50mMトリス‐塩酸緩衝液Aを加えてPolytronHomogenizerを用いて破砕し、4mlずつ超遠心チューブに入れ、28000×g、4°Cで10分間遠心分離した。残渣に2mlの氷冷した50mMトリス‐塩酸緩衝液Aを加えて再懸濁し、2本のチューブをひとつにまとめて再び28000×g、4°Cで10分間遠心分離した。残渣に2mlの氷冷した50mMトリス‐塩酸緩衝液Bを加えて再懸濁し、28000×g、4°Cで10分間遠心分離した。残渣に1mlの氷冷した50mMトリス‐塩酸緩衝液Bを加えて再懸濁し、一つにまとめた。懸濁液は使用するまで80°Cで保存した。タンパク質定量懸濁液のタンパク質濃度はBCA法により測定した。BSAを50mMトリス‐塩酸緩衝液Bで希釈し、BCAproteinstandardを作成した。濃度は1000μgml500μgml250μgml100μgml50μgml25μgml10μgml0μgmlにした。懸濁液を50mMトリス‐塩酸緩衝液Bで110150に希釈し、サンプルを調製した。5000μlのBCAProteinAssayReagentAと100μlのBCAProteinAssayReagentBを混ぜてBCAworkingreagentを調製した。BCAproteinstandardとサンプルをアッセイプレートに10μlずつ入れ、そこにWRを200μl加えた。37°Cで30分インキュベーションした。分光光度計により波長562nmの吸光度を測定し、標準曲線よりタンパク濃度を測定した。3HNisoxetine結合阻害実験次にこの粗シナプス膜画分を用いて、3HNisoxetine結合阻害実験を行った。手順は下記の通りである。懸濁液を50mMトリス‐塩酸緩衝液Bで10mgproteinmlに調製し、チューブに懸濁液400μl、3HNisoxetine、および1012M~103Mの濃度の被検薬物を入れた。被検薬物は非放射性BPBMと、その光学異性体であるBPBMの他に、既存の参考物質として、選択的NET阻害剤であるNisoxetine、Desipramine、およびReboxetineの5種類を使用した。4°Cで240分間インキュベーションした。サンプルに5mlの氷冷した50mMトリス‐塩酸緩衝液Bを加えて反応を止め、01polyethyleneimine溶液に浸したグラスフィルターで吸引濾過し、フィルターを5mlの氷冷した50mMトリス‐塩酸緩衝液Bで3回洗浄した。8mlのACSIIを加えて、液体シンチレーションカウンタで放射能を測定し、これを全結合量とした。非特異的結合は450μlの50mMトリス‐塩酸緩衝液BのみのproteinFreeで測定した。全結合量と非特異的結合量との差を特異的結合量として阻害曲線を得、IC50値はGraphPadPrismを用いて求めた。IC50値は結合量が50になるときの濃度であり、IC50値が小さいほど親和性は高くなる。また、下記式:に従ってKi値を計算した。Ki値は結合能力の指数であり、IC50値と同様に、値が小さいほど親和性は高くなる。得られた3HNisoxetineの結合阻害曲線を図6に、グラフから算出したKi値を表4に示す。非放射性BPBMのKi値と、Nisoxetine、DesipramineのKi値に有意差が認められなかったため、77BrBPBMはNETに対して、既存のNET阻害剤と同程度の強い結合能を有することが明らかとなった。試験例3:77BrBPBMのNETに対する結合選択性実験77BrBPBMのNETに対する結合選択性は文献NKanegawaetalEuropeanJournalofNuclearMedicineandMolecularImagingVol33pp639647に記載された実験方法を参考にして、NETならびにNETとタンパク構造が類似しているSERTおよびDATに結合する阻害剤を用い、試験例2で使用した大脳皮質粗シナプス膜画分への77BrBPBMの結合に対する阻害の程度を比較することで評価した。実験手順は以下の通りである。懸濁液を50mMトリス‐塩酸緩衝液Bで10mgproteinmlに調製し、チューブに懸濁液400μl、77BrBPBM、および1012M~103Mの濃度の被検薬物を入れた。被検薬物は、選択的NET阻害剤であるNisoxetine、Desipramine、Reboxetine、選択的SERT阻害剤であるFluoxetine、選択的DAT阻害剤であるGBR12909を用いた。25°Cで1時間インキュベーションした。サンプルに5mlの氷冷した50mMトリス‐塩酸緩衝液Bを加えて反応を止め、01polyethyleneimine溶液に浸したグラスフィルターで吸引濾過し、フィルターを5mlの氷冷した50mMトリス‐塩酸緩衝液Bで3回洗浄した。γカウンタで放射能を測定し、これを全結合量とした。得られた77BrBPBMの結合阻害曲線を図7に、グラフから算出したIC50値を表5に示す。表5より、FluoxetineのIC50値がNisoxetineの約200倍、GBR12909のIC50値がNisoxetineの約750倍と高く、有意差が認められた。この結果から、77BrBPBMはNETに対し特異的に結合していると考えられる。試験例4:正常ラットにおける77BrBPBMの体内分布実験77BrBPBMの体内での分布を検討するために、ラットを用いた体内分布実験を行った。77BrBPBMの各臓器への分布動態実験の手順は以下の通りである。正常ラットSD10週齢、雄に、生理食塩水に溶解させた77BrBPBMを尾静脈より投与した。一定時間5分、15分、30分、1時間、3時間後に解剖し、各臓器を摘出した。各臓器の重量を測定し、チューブに各臓器を詰めた。γカウンタを用いて各臓器の放射能量を測定した。取り込み量の比較にはIDgを用いた。各臓器での77BrBPBM取り込み量の時間変化を図8に示す。77BrBPBMは投与後、心臓、肺、副腎などのNETを発現する臓器には高く集積し、その後速やかな消失を示した。また、生体内脱臭素の指標となる胃への集積は時間経過とともに低下したため、生体内で安定であることが示唆された。77BrBPBMの脳での分布動態77BrBPBMを投与された上記ラットについて、脳を摘出し、各脳組織について同様に放射能量を測定した。各脳組織での77BrBPBM取り込み量の時間変化を図9に示す。77BrBPBMは投与後速やかに脳内に移行し、脳イメージングの指標となる脳血液比は時間とともに上昇し、投与60分でピークに達した。また、脳内組織において、NETの分布の少ない線条体に比べ、大脳皮質、視床、視床下部などのNETの発現の多い部位の集積は高く、局在性が認められた。脳内の局在性について検討するために、各組織の放射能集積を線条体の放射能集積で除した値を特異的結合の指標とした。その結果、投与180分に特異的結合が最大であると考えられた図10。以上より、この後の実験は77BrBPBMの投与後180分の時点で行った。試験例5:正常ラットにおけるexvivoオートラジオグラフィー実験77BrBPBMのラット脳内における詳細な集積部位を検討するために、exvivoオートラジオグラフィー実験を行った。実験手順は以下の通りである。正常ラットに、生理食塩水に溶解させた77BrBPBMを尾静脈より投与し、180分後に脳を摘出し、ドライアイスで凍結させた。検量線として77BrBPBMを10のゼラチンに溶解させ、重量を測定し、IDgを算出し、37°Cで冷却させた。クリオスタットを用いて厚さ20mmの脳切片を得た後に、イメージングプレートにセットし2日間露光した。FLA7000を用いて画像を取得し、MultiGaugeを用いて画像を解析し、IDgを算出した。得られた画像の一部を図11に、算出されたIDgと、先行研究によるNET発現量TejaniButtSMetalJournalofPharmacologyandExperimentalTherapeuticsVol260pp427436との相関を図12に示す。NETの発現の高い青斑核、視床前核群には77BrBPBMの高い集積が認められた。また中程度の発現の視床、視床下部、大脳皮質への集積は青斑核、視床前核群に比較すると低かったが、NETの発現の無い線条体よりは高かった。報告されているNETの発現量との比較から、77BrBPBMとNET発現量との間には非常によい相関関係が認められた。試験例6:正常ラットにおける脳内選択性の検討77BrBPBMのラット脳内における集積がNET選択的であるかを、invitroでの選択性の検討で用いた阻害剤を用いたexvivoオートラジオグラフィー実験により検討した。実験は以下の手順で行った。生理食塩水に溶解させた77BrBPBMと、NETに結合するNisoxetine10mgkg、SERTに結合するFlioxetine10mgkg、またはDATに結合するGBR129091mgkgとの各混合液をSD系雄性ラット9週齢の尾静脈より投与した。検量線として77BrBPBMを10のゼラチンに溶解させ、重量を測定し、IDgを算出し、37°Cで冷却させた。180分後に脳を摘出しドライアイスで凍結し、クリオスタットを用いて厚さ20mmの脳切片を得た後に、イメージングプレートにセットし2日間露光した。得られた画像を解析し、IDgを算出した。77BrBPBMのみ投与のコントロールおよび各阻害剤同時投与の画像を図13に、画像から算出した各阻害剤及び各脳組織のIDgのグラフを図14に示す。Nisoxetine同時投与では、Nisoxetineによる置換が起きており、77BrBPBMの集積が認められなかった。FlioxetineまたはGBR12909の同時投与では、各部位のIDgが77BrBPBMのみの投与であるコントロールと有意差が認められなかった。よって、脳内においても77BrBPBMがNETに対し特異的に結合していることが示された。以上の検討により、77BrBPBMがNETに対して高い結合能と選択性を持つことが明らかになった。またラット脳内では、NET発現量に応じた集積を示すこと、及びその集積がNET特異的であることが示された。以上の事から77BrBPBMを76BrBPBMに変換することによりPETを用いたNETイメージング剤になることが示唆された。