"ゲル内部に培地を灌流するための流路を設け、血管内皮細胞を誘導させ、ゲル内に血管網を構築させた血管床を作製し、その血管床上へ細胞シートを積層することで細胞シート内に血管網を構築させることを特徴とする細胞シート積層化物の製造方法。ゲル内に血管網を構築させる方法が、血管内皮細胞を含む細胞シートをゲル表面に付着させる方法である、請求項1記載の細胞シート積層化物の製造方法。ゲルが生分解性ポリマー及び/または細胞、請求項1、2のいずれか1項記載の細胞シート積層化物の製造方法。生分解性ポリマーがコラーゲンゲル及び/またはフィブリンゲルである、請求項3記載の細胞シート積層化物の製造方法。温度、雰囲気を一定に保つことができる密閉容器の培地に、細胞シートを積層化した血管床を浸漬させた、請求項1~4のいずれか1項記載の細胞シート積層化物の製造方法。密閉容器内部を加圧した、請求項5記載の細胞シート積層化物の製造方法。培地が、血管新生を促進する因子を含み、毛細血管密度を高めたものである、請求項1~6のいずれか1項記載の細胞シート積層化物の製造方法。細胞シートが、0~80°Cの温度範囲で水和力が変化するポリマーを表面に被覆した細胞培養支持体上で、ポリマーの水和力が弱い温度域で細胞を培養し、その後、培地をポリマーの水和力が強い状態となる温度に変化させることで培養した細胞をシート状で剥離させたものである、請求項1~7のいずれか1項記載の細胞シート積層化物の製造方法。0~80°Cの温度範囲で水和力が変化するポリマーがポリN-イソプロピルアクリルアミドである、請求項1~8のいずれか1項記載の細胞シート積層化物の製造方法。2枚の細胞シート積層化物の天上面同士を重ね合わせることを特徴とする、請求項1~9のいずれか1項記載の細胞シート積層化物の製造方法。血管床上へ積層化された細胞シート上に、さらに流路を設けたゲルを重層することを特徴とする請求項1~10のいずれか1項記載の細胞シート積層化物の製造方法。細胞シート積層化物の上下の流路で、灌流させる培地の流速が異なる、請求項11記載の細胞シート積層化物の製造方法。請求項1~12の製造方法で得られる、血管網を有する細胞シート積層化物。細胞シートが積層化された回数が4以上である、請求項13記載の細胞シート積層化物。細胞が、心筋細胞、心筋芽細胞、筋芽細胞、間葉系幹細胞のいずれか1種、もしくは2種以上の細胞が混合したものである、請求項13または14のいずれか1項記載の細胞シート積層化物。血管内皮細胞が含まれる、請求項15記載の細胞シート積層化物。得られた細胞シート積層化物を生体内へ移植することを特徴とする、請求項13~16のいずれか1項記載の細胞シート積層化物の利用方法。心筋組織へ移植し、心不全、虚血性心疾患、心筋梗塞、心筋症、心筋炎、肥大型心筋症、拡張相肥大型心筋症および拡張型心筋症からなる群より選択される少なくとも1種の心臓の疾患または障害の治療を目的とする、請求項17記載の細胞シート積層化物の利用方法。本発明は、上述したような細胞シートの積層化に関する問題点を解決することを意図してなされたものである。すなわち、本発明は、従来技術と全く異なった発想に基づいて創作した新規な細胞シート積層化物の製造方法、それより得られる血管網を有する細胞シート積層化物及びその利用方法を提供するものである。本発明者らは、上記課題を解決するために、種々の角度から検討を加えて研究開発を行ってきた。その結果、ゲル内部に培地を灌流するための流路を設け、血管内皮細胞を誘導させ、ゲル内に血管網を構築させた血管床を作製し、その血管床上へ細胞シートを積層することで細胞シート内に血管網を構築させることができ、簡便に細胞シートを厚く積層化させられことを見出した。本発明はかかる知見に基づいて完成されたものである。すなわち、本発明は、ゲル内部に設けた培地を灌流するための流路から表面へ血管網を構築させた血管床を作製し、その血管床上へ細胞シートを積層することで細胞シート内に血管網を構築させることを特徴とする細胞シート積層化物の製造方法灌流を提供するものである。さらに、本発明はそれより得られた細胞シート積層化物を提供するものである。さらに本発明は、その細胞シート積層化物を利用する方法を提供するものである。本発明は、血管床を利用して厚さをもった細胞シート積層化物を生体外において作製することができるという世界に類のない新規な発想による細胞構造物を使ってはじめて実現する極めて重要な発明と考えている。本発明に示される製造方法であれば、細胞シート内に血管網を構築させられ、その細胞シートを積層化すれば厚みのある細胞シート積層化物を簡便に作製することができるようになる。このような厚みのある細胞シート積層化物は生体内組織様のものとして、さまざまな組織の再生医療に有用なものになると期待される。本発明は、厚みのある細胞シート積層化物を簡便に作製することを目的としている。そのためには、上述したように細胞シート積層化物中に血管網が構築されることが求められる。本発明ではゲル内部に流路を設けその流路へ培地を灌流することで、ゲル内の流路と表面との間に簡便に血管網を構築させられることが分かった。その一つの技術として、例えば、ゲル表面へ血管内皮細胞を含む細胞シートを接着させ、ゲル内の流路に培地を灌流させると細胞シート内の血管内皮細胞がゲル内に流路へ向かって並び、結果としてゲル内に血管網を構築させられることが挙げられる。その他の技術としては、ゲル内の流路に灌流させる培地に血管内皮細胞を懸濁させるとゲル内の流路と表面の間に血管網を構築させられることが挙げられる。ゲル内部に流路を設ける際、ゲルが充填されない領域が作りだされればよく、そのために利用されるものは特に限定されない。例えば、ステンレスワイヤー、シリコンワイヤー、金属、高分子化合物等、特に限定されるものではない。血管床とは、生体組織、臓器で見られる構造であり、毛細血管とその周辺の組織を合わせた構造をいう。血管床は、血管床内に無数に張り巡らされた毛細血管の薄い壁を介し、生体組織内の酸素、ブドウ糖、その他の栄養素を交換する機能を果たしている。二酸化炭素のような老廃物は血管床の毛細血管内へ滲出する。生体組織において組織液が比較的一定に保たれているのは、毛細血管での物質交換が存在するからである。本発明においては、細胞シート内に効率的に酸素、ブドウ糖、その他の栄養素を交換する機能を行う血管床を生体外において人工的に作製し、利用した。ゲル内部に培地等を灌流させる流路を有する血管床を作製する際、ゲルに細胞を混合して作製しても良い。その際にゲルと混合させる細胞種、細胞数、割合等については何ら限定されるものではないが、移植する生体の組織、臓器、部位、用途等に応じて適宜選択、又は調整すればよい。例えば、心筋組織の再生、或いは心筋機能を評価する方法を目的とした場合、使用する細胞としては心筋細胞、心筋芽細胞、筋芽細胞、間葉系幹細胞、血管内皮細胞、血管内皮前駆細胞、線維芽細胞、骨髄由来細胞、脂肪由来細胞のいずれか1種、もしくは2種以上の細胞が混合したもの等が挙げられ、その種類については何ら制約されるものではない。肝組織の再生、肝組織を模擬した人工肝臓の作製、或いは肝組織の機能を評価する方法等を目的とした場合、例えば、使用する細胞としては、肝実質細胞、類洞内皮細胞、クッパー細胞、星細胞、ピット細胞、胆管上皮細胞、血管内皮細胞、血管内皮前駆細胞、線維芽細胞、骨髄由来細胞、脂肪由来細胞、間葉系幹細胞のいずれか1種、もしくは2種以上の細胞が混合したもの等が挙げられ、その種類については何ら制約されるものではない。腎組織の再生、腎組織を模擬した人工腎臓の作製、或いは腎機能を評価する方法を目的とした場合、例えば、使用する細胞としては、腎細胞、顆粒細胞、集合管上皮細胞、壁側上皮細胞、足細胞、メサンギウム細胞、平滑筋細胞、尿細管細胞、間在細胞、糸球体細胞、血管内皮細胞、血管内皮前駆細胞、線維芽細胞、骨髄由来細胞、脂肪由来細胞、間葉系幹細胞のいずれか1種、もしくは2種以上の細胞が混合したもの等が挙げられ、その種類については何ら制約されるものではない。副腎組織の再生、副腎を模擬した人工副腎の作製、或いは副腎機能を評価する方法を目的とした場合、例えば、使用する細胞としては、副腎髄質細胞、副腎皮質細胞、球状層細胞、束状層細胞、網上層細胞、血管内皮細胞、血管内皮前駆細胞、線維芽細胞、骨髄由来細胞、脂肪由来細胞、間葉系幹細胞のいずれか1種、もしくは2種以上の細胞が混合したもの等が挙げられ、その種類については何ら制約されるものではない。皮膚の再生、或いは皮膚機能を評価する方法を目的とした場合、例えば、使用する細胞としては、表皮角化細胞、メラノサイト、立毛筋細胞、毛包細胞、血管内皮細胞、血管内皮前駆細胞、線維芽細胞、骨髄由来細胞、脂肪由来細胞、間葉系幹細胞のいずれか1種、もしくは2種以上の細胞が混合したもの等が挙げられ、その種類については何ら制約されるものではない。粘膜組織の再生、或いは粘膜組織の機能を評価する方法を目的とした場合、例えば、使用する細胞としては、粘膜を構成する組織から採取される細胞を使用すればよい。粘膜の種類としては、頬側粘膜、胃粘膜、腸管粘膜、嗅上皮、口腔粘膜、子宮粘膜などが挙げられる。粘膜組織から採取される細胞のうち、いずれか1種、もしくは2種以上の細胞が混合したもの等が挙げられ、その種類については何ら制約されるものではない。本発明で使用するゲルは特に限定されないが、得られた細胞シート積層化物を生体内へ移植治療に利用することを目的とした場合は、生分解性ポリマーからなるゲルが好都合である。また、その場合、生分解性ポリマー部が生体内で消失し、本発明の細胞シート積層化物が生体と血管を通して繋がることとなる。そのような生分解性ポリマーの種類は特に限定されないが、コラーゲン、フィブリン、ゼラチン、多糖類、エラスチン、フィブロネクチン、ラミニン、キチン、キトサン等の単独、もしくは2種以上の混合物が挙げられる。等が挙げられる。本発明は、こうして得られた血管網を有するゲルを利用し、それを血管床としてその上に生着した細胞シートへ血管網を構築させようとするものである。すなわち、本発明はゲルという人工物を利用することでも細胞シート内に血管網を構築させる技術を提供するものである。その際、血管床内を循環させるものは培地、血液、血清等と特に限定されるものではないが、取り扱いが簡便なものとしては培地が挙げられる。その培地の種類についても特に限定されるものではないが、血管床上で培養される細胞シートを構成する細胞に適したものが好ましい。例えば、心筋細胞からなる細胞シートを血管床上で積層化するならば心筋細胞を培養するM199培地などが好適である。本発明の細胞シートに使用される細胞の種類は特に限定されるものではなく、得られた細胞シート積層化物を使って移植したい部位の細胞、又は評価を行いたい臓器由来若しくは組織由来の細胞を使用すれば良い。例えば、心筋組織の再生、或いは心筋機能を評価する方法を目的とした場合、使用する細胞としては心筋細胞、心筋芽細胞、筋芽細胞、間葉系幹細胞、血管内皮細胞、血管内皮前駆細胞、線維芽細胞、骨髄由来細胞、脂肪由来細胞のいずれか1種、もしくは2種以上の細胞が混合したもの等が挙げられ、その種類については何ら制約されるものではない。肝組織の再生、肝組織を模擬した人工肝臓の作製、或いは肝組織の機能を評価する方法等を目的とした場合、例えば、使用する細胞としては、肝実質細胞、類洞内皮細胞、クッパー細胞、星細胞、ピット細胞、胆管上皮細胞、血管内皮細胞、血管内皮前駆細胞、線維芽細胞、骨髄由来細胞、脂肪由来細胞、間葉系幹細胞のいずれか1種、もしくは2種以上の細胞が混合したもの等が挙げられ、その種類については何ら制約されるものではない。腎組織の再生、腎組織を模擬した人工腎臓の作製、或いは腎機能を評価する方法を目的とした場合、例えば、使用する細胞としては、腎細胞、顆粒細胞、集合管上皮細胞、壁側上皮細胞、足細胞、メサンギウム細胞、平滑筋細胞、尿細管細胞、間在細胞、糸球体細胞、血管内皮細胞、血管内皮前駆細胞、線維芽細胞、骨髄由来細胞、脂肪由来細胞、間葉系幹細胞のいずれか1種、もしくは2種以上の細胞が混合したもの等が挙げられ、その種類については何ら制約されるものではない。副腎組織の再生、副腎を模擬した人工副腎の作製、或いは副腎機能を評価する方法を目的とした場合、例えば、使用する細胞としては、副腎髄質細胞、副腎皮質細胞、球状層細胞、束状層細胞、網上層細胞、血管内皮細胞、血管内皮前駆細胞、線維芽細胞、骨髄由来細胞、脂肪由来細胞、間葉系幹細胞のいずれか1種、もしくは2種以上の細胞が混合したもの等が挙げられ、その種類については何ら制約されるものではない。皮膚の再生、或いは皮膚機能を評価する方法を目的とした場合、例えば、使用する細胞としては、表皮角化細胞、メラノサイト、立毛筋細胞、毛包細胞、血管内皮細胞、血管内皮前駆細胞、線維芽細胞、骨髄由来細胞、脂肪由来細胞、間葉系幹細胞のいずれか1種、もしくは2種以上の細胞が混合したもの等が挙げられ、その種類については何ら制約されるものではない。粘膜組織の再生、或いは粘膜組織の機能を評価する方法を目的とした場合、例えば、使用する細胞としては、粘膜を構成する組織から採取される細胞を使用すればよい。粘膜の種類としては、頬側粘膜、胃粘膜、腸管粘膜、嗅上皮、口腔粘膜、子宮粘膜などが挙げられる。粘膜組織から採取される細胞のうち、いずれか1種、もしくは2種以上の細胞が混合したもの等が挙げられ、その種類については何ら制約されるものではない。上記の細胞の含有比率についても特に限定されるものではない。その際、細胞シート内に血管内皮細胞、血管内皮前駆細胞等が混合されていると、細胞シート内に血管網の構築が効率良く行われ、好都合である。本発明で用いられる細胞は、生体組織から直接採取した細胞、直接採取し培養系等で分化させた細胞、或いは細胞株が挙げられるがその種類は、何ら制約されるものではない。これらの細胞の由来は特に制約されるものではないが、例えば、ヒト、或いはラット、マウス、モルモット、マーモセット、ウサギ、イヌ、ネコ、ヒツジ、ブタ、ヤギ、サル、チンパンジーあるいはそれらの免疫不全動物等が挙げられるが、本発明の細胞シート積層化物をヒトの治療に用いる場合はヒト、ブタ、サル、チンパンジー由来の細胞を用いる方が望ましい。本発明に利用される細胞は特に限定するものではないが、例えば細胞を試薬、タンパク質、遺伝子等の少なくとも1つ以上の方法によって蛍光染色及びまたは色素染色したものでも良い。レポーター遺伝子が導入されている細胞を利用した際、レポーター遺伝子が発現して作られるレポータータンパクによる蛍光、又はレポータータンパクが特異的な基質と反応する際に放出する蛍光を検出すれば、細胞シート又は細胞シート積層体の活性を知ることができる。利用されるレポーター遺伝子、又はレポータータンパク質は特に限定されないが、例えば、緑色蛍光タンパク質GFP、クロラムフェニコールアセチルトランスフェラーゼCAT、DsReD、β-グルクロニダーゼ、LacZ、カエデ、ルシフェラーゼ、アルカリフォスファターゼ等が挙げられる。細胞へ遺伝子を導入する方法は定法に従えば良く、特に限定されないが、例えば、リポフェクション法、ウイルスベクター法、リン酸カルシウム法、エレクトロポレーション法、DEAEデキストラン法、マイクロインジェクション法等が挙げられる。また、これらの遺伝子導入法を利用して、レポーター遺伝子が宿主ゲノム内に導入された遺伝子導入動物トランスジェニックアニマル由来の細胞を利用しても良い。レポーター遺伝子の発現を調節するプロモーター配列についても特に限定されるものではなく、レポーター遺伝子発現の検出目的に応じ、適宜選択すればよい。本発明における細胞シートは、0~80°Cの温度範囲で水和力が変化するポリマーを表面に被覆した細胞培養支持体上で、ポリマーの水和力が弱い温度域で細胞を培養し、その後、培地をポリマーの水和力が強い状態となる温度に変化させることで培養した細胞をシート状に剥離させることで得られる。その際、細胞は0~80°Cの温度範囲で水和力が変化するポリマーを表面に被覆した細胞培養支持体上で、ポリマーの水和力の弱い温度域で培養される。その温度とは通常、細胞を培養する温度である37°Cが好ましい。本発明に用いる温度応答性高分子はホモポリマー、コポリマーのいずれであってもよい。このような高分子としては、例えば、特開平2-211865号公報に記載されているポリマーが挙げられる。具体的には、例えば、以下のモノマーの単独重合または共重合によって得られる。使用し得るモノマーとしては、例えば、メタアクリルアミド化合物、N-若しくはN,N-ジアルキル置換メタアクリルアミド誘導体、またはビニルエーテル誘導体が挙げられ、コポリマーの場合は、これらの中で任意の2種以上を使用することができる。更には、上記モノマー以外のモノマー類との共重合、ポリマー同士のグラフトまたは共重合、あるいはポリマー、コポリマーの混合物を用いてもよい。また、ポリマー本来の性質を損なわない範囲で架橋することも可能である。その際、培養、剥離されるものが細胞であることから、分離が5°C~50°Cの範囲で行われるため、温度応答性ポリマーとしては、ポリ-N-n-プロピルアクリルアミド単独重合体の下限臨界溶解温度21°C、ポリ-N-n-プロピルメタクリルアミド同27°C、ポリ-N-イソプロピルアクリルアミド同32°C、ポリ-N-イソプロピルメタクリルアミド同43°C、ポリ-N-シクロプロピルアクリルアミド同45°C、ポリ-N-エトキシエチルアクリルアミド同約35°C、ポリ-N-エトキシエチルメタクリルアミド同約45°C、ポリ-N-テトラヒドロフルフリルアクリルアミド同約28°C、ポリ-N-テトラヒドロフルフリルメタクリルアミド同約35°C、ポリ-N,N-エチルメチルアクリルアミド同56°C、ポリ-N,N-ジエチルアクリルアミド同32°Cなどが挙げられる。本発明に用いられる共重合のためのモノマーとしては、ポリアクリルアミド、ポリ-N、N-ジエチルアクリルアミド、ポリ-N、N-ジメチルアクリルアミド、ポリエチレンオキシド、ポリアクリル酸及びその塩、ポリヒドロキシエチルメタクリレート、ポリヒドロキシエチルアクリレート、ポリビニルアルコール、ポリビニルピロリドン、セルロース、カルボキシメチルセルロースなどの含水ポリマーなどが挙げられるが、特に制約されるものではない。本発明で用いられる、上述の各ポリマーの基材表面への被覆方法は、特に制限されないが、例えば、基材と上記モノマーまたはポリマーを、電子線照射EB、γ線照射、紫外線照射、プラズマ処理、コロナ処理、有機重合反応のいずれかにより、または塗布、混練等の物理的吸着等により行うことができる。培養基材表面への温度応答性ポリマーの被覆量は、1.1~2.3μg/cm2の範囲が良く、好ましくは1.4~1.9μg/cm2であり、さらに好ましくは1.5~1.8μg/cm2である。1.1μg/cm2より少ない被覆量のとき、刺激を与えても当該ポリマー上の細胞は剥離し難く、作業効率が著しく悪くなり好ましくない。逆に2.3μg/cm2以上であると、その領域に細胞が付着し難く、細胞を十分に付着させることが困難となる。このような場合、温度応答性ポリマー被覆層の上にさらに細胞接着性タンパク質を被覆すれば、基材表面の温度応答性ポリマー被覆量は2.3μg/cm2以上であっても良く、その際の温度応答性ポリマーの被覆量は9.0μg/cm2以下が良く、好ましくは8.0μg/cm2以下が良く、7.0μg/cm2以下が好都合である。温度応答性ポリマーの被覆量が9.0μg/cm2以上であると温度応答性ポリマー被覆層の上にさらに細胞接着性タンパク質を被覆しても細胞が付着し難くなり好ましくない。そのような細胞接着性タンパク質の種類は何ら限定されるものではないが、例えば、コラーゲン、ラミニン、ラミニン5、フィブロネクチン、マトリゲル等の単独、もしくは2種以上の混合物が挙げられる。また、これらの細胞接着性タンパク質の被覆方法は常法に従えば良く、通常、細胞接着性タンパク質の水溶液を基材表面に塗布し、その後その水溶液を除去しリンスする方法がとられている。本発明は、温度応答性培養皿を利用したなるべく細胞シートそのものを利用しようとする技術である。従って、温度応答性ポリマー層上の細胞接着性タンパク質の被覆量が極度に多くなっては好ましくない。温度応答性ポリマーの被覆量、並びに細胞接着性タンパク質の被覆量の測定は常法に従えば良く、例えばFT-IR-ATRを用いて細胞付着部を直接測る方法、あらかじめラベル化したポリマーを同様な方法で固定化し細胞付着部に固定化されたラベル化ポリマー量より推測する方法などが挙げられるがいずれの方法を用いても良い。本発明の方法において、培養時に播種する細胞数は使用細胞の動物種によって異なるが、一般的に0.4×106~2.5×106個/cm2が良く、好ましくは0.5×106~2.1×106個/cm2が良く、さらに好ましくは0.6×106~1.7×106個/cm2が良い。播種濃度が0.4×106個/cm2以下の場合、一般に細胞の増殖が悪く、得られる細胞シートの機能の発現程度が悪化し、本発明を実施する点において好ましくない。本発明においては、培養した細胞シートを温度応答性基材から剥離回収するには、培養された細胞の付着した培養基材の温度を培養基材上の被覆ポリマーの上限臨界溶解温度以上若しくは下限臨界溶解温度以下にすることによって剥離させることができる。その際、培地中において行うことも、その他の等張液中において行うことも可能であり、目的に合わせて選択することができる。細胞をより早く、より高効率に剥離、回収する目的で、基材を軽くたたいたり、ゆらしたりする方法、更にはピペットを用いて培地を撹拌する方法等を単独で、あるいは併用して用いてもよい。温度以外の培養条件は、常法に従えばよく、特に制限されるものではない。例えば、使用する培地については、公知のウシ胎児血清FCS等の血清が添加されている培地でもよく、また、このような血清が添加されていない無血清培地でもよい。以上のことを温度応答性ポリマーとしてポリN-イソプロピルアクリルアミドを例にとり説明する。ポリN-イソプロピルアクリルアミドは31°Cに下限臨界溶解温度を有するポリマーとして知られ、遊離状態であれば、水中で31°C以上の温度で脱水和を起こしポリマー鎖が凝集し、白濁する。逆に31°C以下の温度ではポリマー鎖は水和し、水に溶解した状態となる。本発明では、このポリマーがシャーレなどの基材表面に被覆、固定されたものである。したがって、31°C以上の温度であれば、基材表面のポリマーも同じように脱水和するが、ポリマー鎖が基材表面に被覆、固定されているため、基材表面が疎水性を示すようになる。逆に、31°C以下の温度では、基材表面のポリマーは水和するが、ポリマー鎖が基材表面に被覆、固定されているため、基材表面が親水性を示すようになる。このときの疎水的な表面は細胞が付着、増殖できる適度な表面であり、また、親水的な表面は細胞が付着できないほどの表面となり、培養中の細胞、もしくは細胞シートも冷却するだけで剥離させられることになる。被覆を施される基材としては、通常細胞培養に用いられるガラス、改質ガラス、ポリスチレン、ポリメチルメタクリレート等の化合物を初めとして、一般に形態付与が可能である物質、例えば、上記以外のポリマー化合物、セラミックス類など全て用いることができる。本発明における培養基材の形状は特に制約されるものではないが、例えばディッシュ、マルチプレート、フラスコ、多孔膜上で培養するセルインサートのような形態のもの、或いは平膜状のものなどが挙げられる。被覆を施される基材としては、通常細胞培養に用いられるガラス、改質ガラス、ポリスチレン、ポリメチルメタクリレート等の化合物を初めとして、一般に形態付与が可能である物質、例えば、上記以外の高分子化合物、セラミックス類などが挙げられる。本発明における細胞シートは培養時にディスパーゼ、トリプシン等で代表される蛋白質分解酵素による損傷を受けていないものである。そのため、基材から剥離された細胞シートは接着性蛋白質を有し、細胞をシート状に剥離させた際には細胞-細胞間のデスモソーム構造がある程度保持されたものとなる。このことにより、血管床上へ載せたとき良好に接着することができ、効率良く生着することができるようになる。一般に蛋白質分解酵素であるディスパーゼに関しては、細胞-細胞間のデスモソーム構造については10~40保持した状態で剥離させることができることで知られているが、細胞-基材間の基底膜様蛋白質等を殆ど破壊してしまうため、得られる細胞シートは強度の弱いものとなる。これに対して、本発明の細胞シートは、デスモソーム構造、基底膜様蛋白質共に60以上残存された状態のものであり、上述したような種々の効果を得ることができるものである。本発明における細胞シートの積層体を作製する方法についても特に限定されるものではないが、例えば、培養細胞をシート状で剥離させ、必要に応じ培養細胞移動治具を用いて培養細胞シート同士を積層化させることで得られる。その際、培地の温度は、培養基材表面に被覆された前記ポリマーが上限臨界溶解温度を有する場合はその温度以下、また前記ポリマーが下限臨界溶解温度を有する場合はその温度以上であれば特に制限されない。しかし、培養細胞が増殖しないような低温域、あるいは培養細胞が死滅するような高温域における培養が不適切であることは言うまでもない。温度以外の培養条件は、常法に従えばよく、特に制限されるものではない。例えば、使用する培地については、公知のウシ胎児血清FCS等の血清が添加されている培地でもよく、また、このような血清が添加されていない無血清培地でもよい。また、必要に応じ、細胞シートを移動させるための治具を利用しても良い。そのような治具としては、剥離した細胞シートを捕捉できるものであれば材質、形状共に何ら限定されるものではないが、それらの材質としては、通常、ポリビニリデンジフルオライドPVDF、シリコン、ポリビニルアルコール、ウレタン、セルロース及びその誘導体、キチン、キトサン、コラーゲン、ゼラチン、フィブリングルー等の材料を膜状、多孔膜状、不織布状、織布状として細胞シートに接触させて使用される。かくして本発明により、厚みのある細胞シート積層化物が得られる。本発明のように血管網を構築させなかった場合、積層化された細胞シートが生存し続けるためには3層程度の積層しかできなかった。本発明によれば細胞シートを4層以上積層化することができるようになる。その際、積層化方法は特に限定されないが、一度に細胞シートを積層化するよりも、3層以下の細胞シートを複数回に分けて積層化する方が好ましい。また、その積層化時期は血管床と繋がる血管網が十分に構築されたときとする方が好ましい。積層化回数は、細胞シート積層化物が使用される目的に適宜合わせれば良く特に問われないが、好ましくは5層以上、より好ましくは10層以上、さらに好ましくは15層以上が良い。細胞シート積層化物の厚みが増せば、本発明の効果を顕著に受けられ、また移植先においても大量の細胞を移植できることとなり好都合である。また、本発明では2枚の細胞シート積層化物の天上面同士を重ね合わせることで、細胞シート積層化物の上面側及び下面側双方に流路を有した構造体を得ることができ、その流路を生体側と繋ぐことで効率良く細胞シート積層物内に栄養、酸素を導入することもできるようになる。別の方法として、血管床上へ積層化された細胞シート上に、さらに流路を設けたゲルを重層することで、細胞シート積層化物の上面及び下面の双方に流路を有した構造体を得ることができる。作製された細胞シート積層化物は、上面及び下面に細胞シート内部と繋がった血管様構造の流路を持つ。その流路と生体側との血管が繋がることで効率良く細胞シート積層物内に栄養、酸素を導入することもできるようになる。本発明においては、その血管網の構築方法については何ら限定されるものではない。その際、ゲル中で灌流される培地の流速は特に限定されるものではなく、ゲル内の流路が破壊されない程度の流速を最大の流速とし、灌流された培地がゲル内へ浸み出し、培地がゲル表面へ到達できる流速を最小の流速とすれば良い。その数値としては流路のサイズやゲルの性質等の因子が大きく影響するため具体的に示すことはできない。血管床上へ積層化された細胞シート上に、さらに流路を設けたゲルを重層することで上面及び下面の双方に流路を有した細胞シート積層化物を作製する際、細胞シート積層化物の上下の流路において、培地の流速を変えて灌流させてもよい。細胞シート積層化物の上下の流路で培地の流速を変えて灌流培養させた場合、より速く培地が灌流する側の流路に向かって血管内皮細胞が遊走する現象がみられる。そのため、血管内皮細胞の遊走が促進されることにより、成熟した毛細血管網を有した細胞シート積層化物が得られる。細胞シート積層化物の上側と下側の両方の流路に血管内皮細胞が遊走させるために、灌流させる培地の流速を、一定時間毎に上下で入れ替える方法でも良い。細胞シート積層化物を灌流培養する際の温度、湿度、雰囲気は、細胞を培養する際に利用する定法に従えば良く、何ら限定するものではない。その際、血管床上で積層化された細胞シート積層化物は、血管床中のゲルに形成された流路から培地を灌流させて培養する方法でも良く、温度、湿度、雰囲気が一定に保てる密閉容器に満たした培地中に浸漬させて培養する方法でも良く、培地に浸漬した状態で血管床中のゲルに形成された流路から培地を灌流させて培養する方法でも良い。培地に浸漬した状態で血管床中のゲルに形成された流路から培地を灌流させる方法で培養すると、血管床中での血管形成や、細胞シート積層体内の血管形成が促進され、良い。温度、湿度、雰囲気が一定に保てる密閉容器を加圧しながら血管床上で積層化された細胞シート積層化物を培養すると、培地の溶存酸素濃度が上昇し、血管形成が促進され、良い。加圧力は容器の大きさ、培養する細胞シート積層化物の大きさ、培地の量により、様々な因子が大きく影響するため、適宜最適化すればよい。本発明においては、5mmHg以上でもよく、好ましくは、10mmHg以上でもよく、最も好ましくは、15mmHg以上が良い。細胞シート積層化物内、及び細胞シート積層化物と血管床との間に毛細血管網の構築を促進させる方法として、血管床に灌流させる培地、又は血管床全体を浸漬させる培地、若しくはその両方の培地中に、血管新生を促進する因子を添加する方法が挙げられる。ここで添加する因子としては、血管新生を誘導する因子であれば良く、特に限定するものではない。例えば、血管内皮成長因子VEGF、肝細胞成長因子HGF、線維芽細胞成長因子FGF、上皮成長因子EGF、血小板由来成長因子PDGF、インシュリン様成長因子IGF、アンギオポエチン、トランスフォーミング増殖因子βTGF-β、胎盤成長因子PIGF、MMP、又は上述した因子のファミリータンパク等が挙げられる。培地に添加する血管新生を促進する因子としては、上述の中から一つを選んでも良く、二以上を組み合わせても良い。培地に添加する血管新生を促進する因子の濃度は、細胞シートに含まれる細胞の種類、数、細胞シートの大きさ、血管床の種類他、様々な因子が大きく影響するため、適宜最適化すればよく、ここでは具体的に示すことはできない。細胞シート積層化物を灌流培養する際の温度、湿度、雰囲気は、細胞を培養する際に利用される定法に従えば良く、何ら限定するものではない。その際、細胞シートが積層化物は、血管床中のゲルに形成された流路から培地を灌流させて培養しても良く、温度、湿度、雰囲気が一定に保てる密閉容器を満たした培養容器に培地を満たしたものに浸漬して培養してもよい。最も好ましい方法としては、温度、湿度、雰囲気が一定に保てる密閉容器を満たした培養容器に培地を満たしたものに浸漬しつつ、血管床中のゲルに形成された流路から培地を灌流させて培養する方法である。本発明により作製される細胞シート積層化物に成熟した血管網を構築される方法として、ゲルによる血管床上に積層化した細胞シート積層体を、ゲルの血管床から剥離し、ヒトを含む動物の生体から切除した生体組織片由来の血管床、皮弁、又は動脈及び静脈を備えた人工血管床上に再移植する方法が挙げられる。生体組織片由来の血管床、皮弁、又は動脈及び静脈を備えた人工血管床は、生体由来の動脈と静脈を保持しており、これらの動脈と静脈を介して、本発明で得られた細胞シート積層化物が毛細血管網で繋がることにより、生体内の所定部位に移植することが可能な細胞シート積層化物が得られる。なお、生体由来の血管床を作る方法は特に限定されるものではないが、動脈と静脈がそれぞれ繋がっている生体組織片を電気メス等で切離し、生体組織片と動脈と静脈がそれぞれ1本ずつ繋がった状態を作り出し、その状態を維持したまま、一週間程度、生体内に留置する方法が挙げられる。また、人工血管床とは、毛細血管網が構築され、毛細血管網の間をゲル及び/または細胞により充填された血管床様構造物のことをいう。人工血管床を作製する方法は特に限定される訳ではないが、例えば、無菌的な容器内により区切られた領域内に生体内の動脈と静脈を吻合した動脈―静脈ループを内包し、区切られた領域内にゲルを充填し、生体内に留置することで毛細血管網を構築させる方法が挙げられる。人工血管床に含まれる細胞は、特に限定されるものではなく、移植する部位、用途により適宜選択される。本発明で得られた細胞シート積層化物を生体内の所定部位に移植することができる。その方法は特に問われないが、本発明の細胞シート積層化物に設けられた流路と生体側の血管を繋げる方法、細胞シート積層化物表面を生体へ付着させる方法等が挙げられ、その際、移植部位にあらかじめ血管誘導を施されていても良く特に限定されるものではない。ここで、血管誘導を施す方法も特に限定されるものではないが、例えば、血管増殖因子であるFGFをミクロスフィアに包埋し、このミクロスフィアの組成、大きさ、注入範囲を変えながら生体に8~10日間作用させる方法、ポリエチレンテレフタレートメッシュを任意の大きさに切り、袋状のものを作製し、そのバッグの内側に、高濃度アガロース溶液に溶解させたFGFを入れ、8~10日間後、そのバッグを除去することにより、血管誘導された空間を作製する方法などが挙げられる。ヒトに対し、本発明の細胞シート積層体を利用すれば、移植された細胞シート積層体はヒトの生体内で機能を長期間発現することとなる。そして、剥離された細胞シート積層体の大きさや形状、もしくは両者で機能の発現量を制御できる。このような細胞シート積層体は、例えば構成する細胞として、心筋細胞、心筋芽細胞、筋芽細胞、間葉系幹細胞とすれば、心不全、虚血性心疾患、心筋梗塞、心筋症、心筋炎、肥大型心筋症、拡張相肥大型心筋症および拡張型心筋症からなる群より選択される疾患または障害を伴う各疾患の治療を目的に使用されるが、使用する細胞種によって適宜、移植先が特定され、特に限定されるものではない。動物に対し、本発明の細胞シート及びその三次元構造体が移植されれば、医薬品評価用動物となる。そして、剥離された細胞シート積層体の大きさや形状で機能の発現量を制御できる。ここで使用される動物はラット、マウス、モルモット、マーモセット、ウサギ、イヌ、ブタ、チンパンジーあるいはそれらの免疫不全動物等が挙げられるが特に限定されるものではない。このような移植動物は、例えば、被検物質をこの動物に投与し、当該被検物質の心機能への影響を判定する心機能評価システム等を目的に使用されるが、特に限定されるものではない。以下に、本発明を実施例に基づいて更に詳しく説明するが、これらは本発明を何ら限定するものではない。心筋細胞シートの作製方法本実験は生後0日のSD系ラットの心臓から単離培養した心筋細胞を使用した。仔ラットから心臓摘出後、組織主要構成要素であるコラーゲンを分解する酵素であるコラゲナーゼTypeIIWorthington社製を用い心筋細胞を単離した。単離した心筋細胞を320×104celldishの濃度で温度応答性培養皿φ35mm、DishUpcellTypeECellSeed社製に播種した。4日後、心筋細胞が培養皿表面でコンフルエント状態になったところで20°Cに温度を降下させることでシート状の心筋細胞群を回収した。本実験ではピペッティングにより3層に積層した組織を使用した。流路を設けたゲルの作製方法図1に示すようにアクリルフレームにステンレスワイヤーを設置し、そのフレーム内へコラーゲンゲル溶液を流し込み硬化させゲル化させた。その後、ステンレスワイヤーを取り出し、マイクロ流路を有したゲルが得られた。図1のEに相当する装置の写真及び当該装置を用いて細胞シート内に血管網を構築する方法を説明する模式図を図2に示す。図3はコラーゲンゲルで流路を形成した図を示す。またこのものへ培地を灌流するための装置概要の模式図左及び装置の一例の写真右を図4に示す。図4左に示される矢印は培地が流れる方向を示す。コラーゲンゲル上での細胞シートの積層化細胞シートを多数積層してコラーゲンゲルに接着させた。具体的方法として、培養皿上に26層の心筋細胞シートを浮遊させ、ピペットエイドで培地を出入れして培養皿上で一度に積み上げた後に、30分間インキュベートして接着一体化させた。その後、コラーゲンゲル上に接着させた。図5右に示す灌流培養バイオリアクターにおいて、血管床に積層化した細胞シート積層化物を培地中に浸漬させつつ、流路から培地を灌流させて培養を行った。細胞シートとコーラゲンゲル血管床へとの間の血管新生血管床上で細胞シートを灌流培養すると、ラットの心臓から単離した細胞中に含まれる血管内皮細胞が、流路に向かって遊走し、血管床と細胞シートの間に毛細血管網を形成した図5A。流路にアクリル樹脂を流し、硬化させることで新生した血管の様子を観察した。その結果、血管床と細胞シートとの間に無数の毛細血管網が形成されていることが明らかとなった図5B。コラーゲンゲル血管床上細胞シートの加圧灌流培養法細胞シートの積層化枚数の増加に伴い、細胞の代謝に必要な酸素量も増加する。そこで、灌流培養させる溶存酸素量を増加させる目的で、血管床を設置する密閉容器に、加圧する機構を備えた装置を追加し、上述した方法に加えて加圧灌流培養を行った。20mmHgで加圧した場合、加圧せずに培養した時に比べ、培地中の溶存酸素量も増加し、細胞シート内の血管網構築並びに血管床と細胞シート積層化物との間の血管網形成が促進されたデータは示さず。以後の実験においては、20mmHgの加圧培養にて実験を行った。一度に積層化する方法コラーゲンゲル血管床上で細胞シートを5日間の灌流培養後、灌流装置から積層心筋細胞シート付きコラーゲンゲルをはずしてパラフォルムアルデヒド4で組織固定した後、パラフィンにて切片に切り出した。パラフィン切片をHE染色によって観察した各層の断面の画像を図5Aに示す。図5のAに示す黒い矢頭は、細胞シートに含まれていた血管内皮細胞がゲルの血管床中の流路に向かって遊走して形成された毛細血管を示す。図5Bはゲルの流路にアクリル樹脂を流して硬化させ、その後にゲルと細胞シートを除去したものを示す。各層の組織の厚さを測定方法は、HE染色画像を2値化して10か所の厚みを測定した。その結果、2層3層の厚みは積層数に比例して厚さが増加しているが、4層以上になると組織厚が増加することなく厚みの変化がなかった。測定値は1層:約7μm、2層:約18μm、3層:約24μm、4層:約23μm、5層:約26μm、6層:約23μmという結果になった。すなわち、3層までは積層数に比例して組織の厚みは増加したが、3層以上積層した組織厚はすべて3層の厚さとほぼ同様になった図6A。これは、細胞シート内の拡散による酸素栄養の供給、老廃物の除去が3層までしか届かずに、4層目以上の細胞シートが壊死してしまうことが原因として考えられる。多段階による積層化方法そこで、コラーゲンゲル内人工流路と細胞シートにより血管網が構築されてから、繰り返し積層を行うことを考案した。初代培養心筋細胞シートには心筋細胞以外に線維芽細胞、内皮細胞、平滑筋細胞が含まれているため、細胞シート内に血管を有していることとゲル培養を行うと血管新生を行うことが期待される。そこで、コラーゲンゲル内に培地を灌流した流路を作製し、そのコラーゲンゲル流路上で初代培養心筋細胞シートを培養すると細胞シートから血管が新生され人工流路と繋がれば厚い組織でも心筋細胞に新鮮な培地が供給されると考えた。そこで供給される血管が構築されてから、繰り返し細胞シートの積層を行った。前述の実験より、灌流培養時に1度で積層する限界数は3層であった事と、人工流路と細胞シートとの間に血管網が構築し接続するのに5日間を要する事を参照に繰り返し実験を行った。その結果を図6Bに示す。具体的には5日間のインターバルで積層数は3枚以内で積重していく方法を行った。今回、13層3層:6層計10日間培養したものと、23層3層2層:8層計15日間、33層3層3層:9層計15日間を灌流培養した組織と、単一積層3層、5日間の組織と比べて、厚みがどのように変化したのかを観察した。培養後、検体はパラフォルムアルデヒド4で固定し、パラフィン切片をHEで染色した。染色した各々の組織を図7に示した。3層3層3層を5日間のインターバル培養期間を置いて、計15日間の繰り返し積層を行った。その結果、78±11μmの厚みが観察された。そして、3層3層3層を15日間かけて灌流培養を行った結果、9層は壊死することなく115±10μmの厚みを維持することが出来た。この厚みは、表面からの拡散による酸素栄養の供給厚みを超えていることから、血管が構築されて上部へ培地が供給されてから繰り返し細胞シート積層していく方法の有効性が示された。本実験による培養装置を使用すれば移植可能な組織構築の構築が可能なことが示された。流路を設けたゲルの作製方法図8に示すように、細胞シート積層化物の上下に流路が作製されるよう設計した血管床形成容器を作製した。アクリルフレームにステンレスワイヤーを設置し、そのフレーム内へコラーゲンゲル溶液を流し込み硬化させゲル化させ、下部のステンレスワイヤーを取り出し、マイクロ流路を有したゲルを得た。その後、実施例1の方法により、3層の心筋細胞シートを積層化した。その後、細胞シート積層化物の上部にステンレスワイヤーを設置し、そのフレーム内へコラーゲンゲル溶液を流し込みゲル化させ、上部のステンレスワイヤーを取り出して、上部の流路にも流路を作製した。本実験においては、下部の流路の流速を500μL/min図8左、MicrochannelA、上部の流路の流速を250μL/min図8左、MicrochannelBにて培養を行い、図4のバイオリアクターにて5日間の灌流培養を行った。灌流培養後、細胞シート内の毛細血管網と血管床の流路とが繋がっているか確かめるため、下部の流路から血液を灌流した図9A。その結果、細胞シートの上部の色が変化し、ゲルと細胞シート積層化物の間に流路が形成されていることが分かった。さらに、上下の流路の形成された血管様構造を確認した図9B。その結果、流速の早い下部の流路に向かって血管内皮細胞が遊走し、血管網を形成していることがわかった図9B。細胞シート積層化物の上下の流速を上述と逆にした場合、流速の早い上部の流路に向かって血管内皮細胞が遊走した。このことから、血管内皮細胞による血管網構築は、培地の流速という物理的特性に影響されて血管網を構築されることが示唆された。さらに、細胞シートと流路との間が100μm以内の距離であれば、効率的に血管内皮細胞が遊走し、血管様組織が構築されることが示唆された。細胞シート積層化物の血管新生モデル図10には、血管床をつかった細胞シート積層化物の作製時に誘導される血管網の構築の概要を示す図である。コラーゲンゲル上に載せた細胞シート図10Aから血管内皮細胞が流路に向かって遊走し図10B、流路の内壁を血管内皮細胞が覆い、管腔構造が形成される図10C。その後、さらに上層に細胞シート積層体を移植しすると図10D、ゲル流路と繋がった管腔構造と、新たに積層化した細胞シート内の血管内皮細胞とが繋がり、血管形成がおこなわれる図10E。この過程を繰り返すことで、厚さをもった細胞シート積層物を作製することができる図10E。"