"DNA分子であって、a配列番号:1、配列番号:2、配列番号:3、配列番号:4、配列番号:7および配列番号:8からなる群より選択される配列を有するポリヌクレオチド分子、b配列番号:6と少なくとも95同一であるヌクレオチド配列を有するポリヌクレオチド分子、またはcaまたはbに相補的な配列を有するポリヌクレオチド分子を含む、DNA分子。前記DNA分子が事象MON88302由来であり、事象MON88302を含む種子の代表的試料がATCC受入番号PTA-10955で寄託されている、請求項1に記載のDNA分子。前記DNA分子が、アブラナ属植物、植物細胞、種子、後代植物、植物器官または商品である、請求項1に記載のDNA分子。前記DNA分子が、事象MON88302からのDNA由来のテンプレート分子から生成されるアンプリコンである、請求項1に記載のDNA分子。前記DNA分子が、事象MON88302の存在に特徴的である、請求項1に記載のDNA分子。事象88302の存在に特徴的なポリヌクレオチドプローブであって、前記ポリヌクレオチドプローブが配列番号:1または配列番号:2を含む核酸分子と結合するのに十分な長さであり、前記ポリヌクレオチドプローブがストリンジェントなハイブリダイゼーション条件下で、配列番号:1または配列番号:2を含むDNA分子とハイブリダイズし、ストリンジェントなハイブリダイゼーション条件下では配列番号:1または配列番号:2を含まないDNA分子とはハイブリダイズしないことを特徴とする、事象88302の存在に特徴的なポリヌクレオチドプローブ。DNA試料中で事象MON88302由来のDNA分子の存在を検出する方法であって、aDNA試料を請求項6のポリヌクレオチドプローブと接触させるステップと、b前記試料および前記ポリヌクレオチドプローブをストリンジェントなハイブリダイゼーション条件に晒すステップと、c前記DNA分子への前記ポリヌクレオチドプローブのハイブリダイゼーションを検出するステップとを含み、前記ハイブリダイゼーションの検出が、前記DNA試料中の事象MON88302由来の前記DNA分子の存在に特徴的である、方法。第1のDNA分子および第1のDNA分子とは異なる第2のDNA分子からなるDNA分子対であって、前記DNA分子が、事象MON88302由来のテンプレートとの増幅反応において一緒に用いられるときにDNAプライマーとして機能して試料中の事象MON88302DNAに特徴的なアンプリコンを生成する、配列番号:6の十分な長さの隣接するヌクレオチドのヌクレオチド配列またはその相補体を有するポリヌクレオチド分子を含む、DNA分子対。前記アンプリコンが配列番号:1および配列番号:2からなる群より選択されるヌクレオチド配列を含む、請求項8に記載のDNA分子対。DNA試料中で事象MON88302由来のDNA分子の存在を検出する方法であって、a請求項8に記載のDNA分子対にDNA試料を接触させるステップと、b配列番号:1または配列番号:2の隣接する少なくとも40ヌクレオチドを有するポリヌクレオチド分子を含むアンプリコンを生成するのに十分な増幅反応を実行するステップと、c前記アンプリコンを検出するステップとを含み、前記アンプリコンの検出が、前記DNA試料中の事象MON88302由来の前記DNA分子の存在に特徴的である、方法。事象MON88302由来のDNAの存在を検出するのに特異的なDNAプライマーまたはポリヌクレオチドプローブとして機能する、配列番号:6の十分な長さの隣接するヌクレオチドのヌクレオチド配列およびその相補体を含む少なくとも1つのポリヌクレオチド分子を含むDNA検出キットであって、前記DNAの検出が、試料中の前記事象MON88302DNAの存在に特異的である、DNA検出キット。配列番号:1、配列番号:2、配列番号:3、配列番号:4、配列番号:7および配列番号:8からなる群より選択されるヌクレオチド配列を有するポリヌクレオチド分子を含む、植物、種子、細胞またはその植物器官。前記植物、種子、細胞またはその植物器官がグリホサート系除草剤処理に耐性である、請求項12に記載の植物、種子、細胞またはその植物器官。前記植物、種子、細胞またはその植物器官のゲノムが、DNA増幅方法で試験されるとき事象MON88302に特徴的なにアンプリコンを生成する、請求項12に記載の植物、種子、細胞またはその植物器官。前記植物器官が、花粉、胚珠、鞘、花、根組織、茎組織または葉組織からなる群より選択される、請求項12に記載の植物器官。事象MON88302を含む植物、種子、細胞またはその植物器官であって、事象MON88302を含む種子の代表的試料がATCC受入番号PTA-10955で寄託されている、事象MON88302を含む植物、種子、細胞またはその植物器官。前記植物、種子、細胞またはその植物器官がグリホサート系除草剤処理に耐性である、請求項16に記載の植物、種子、細胞またはその植物器官。前記植物または種子が、事象MON88302由来の少なくとも1つの親を有するハイブリッドである、請求項16に記載の植物または種子。DNA増幅方法で試験するときに事象MON88302に特徴的なアンプリコンを生成することのできる種子、植物またはその器官であって、前記アンプリコンが配列番号:1、配列番号:2、配列番号:3、配列番号:4、配列番号:7および配列番号:8からなる群より選択される配列を有するDNA分子を含む、種子、植物またはその器官。配列番号:1、配列番号:2、配列番号:3、配列番号:4、配列番号:7および配列番号:8からなる群より選択されるDNA分子を含む、事象MON88302由来の非生存植物材料。配列番号:1、配列番号:2、配列番号:3、配列番号:4、配列番号:7および配列番号:8からなる群より選択されるヌクレオチド配列を有するポリヌクレオチド分子を含む微生物。前記微生物が植物細胞である、請求項21に記載の微生物。事象MON88302を含む植物、種子、細胞またはその植物器官由来の商品前記商品が、配列番号:1、配列番号:2、配列番号:3、配列番号:4、配列番号:7および配列番号:8からなる群より選択されるヌクレオチド配列を有するDNA分子を含む、請求項23に記載の商品。前記商品が、無損傷の種子または加工種子、動物飼料、油、ミール、穀物粉、フレーク、ふすま、バイオマスおよび燃料製品からなる群より選択される、請求項23に記載の商品。事象MON88302を含む植物を含んだ圃場における雑草防除方法であって、事象MON88302を含む前記植物を損傷させることなく前記圃場における雑草の生長を防除するのに有効な量のグリホサートを用いて前記圃場を処理するステップを含む、方法。雑草の生長を防除するのに有効なグリホサートの前記量が、1エーカー当たり約0.125ポンド~約6.4ポンドである、請求項26に記載の方法。雑草の生長を防除するのに有効なグリホサートの前記量が、1エーカー当たり約1.6ポンドである、請求項27に記載の方法。圃場を処理する前記ステップが、事象MON88302を含む前記植物の6葉期を超えて行われる、請求項26に記載の方法。グリホサート系除草剤の施用に耐えるアブラナ属植物を生成する方法であって、a事象MON88302を含むグリホサート耐性アブラナ属植物を第2のアブラナ属植物と交雑させ、これにより種子を生成するステップと、b前記種子を生育させて複数の後代植物を生成するステップと、c事象MON88302を含む後代植物を選択するステップとを含む、方法。後代植物を選択する前記ステップが、前記後代植物をグリホサートで処理するステップと、グリホサート耐性のある後代植物を選択するステップとを含む、請求項30に記載の方法。後代植物を選択する前記ステップが、配列番号:1、配列番号:2、配列番号:3、配列番号:4、配列番号:7および配列番号:8からなる群より選択されるヌクレオチド配列を有するDNA分子を含む後代植物を同定するステップを含む、請求項30に記載の方法。前記第2のアブラナ属植物がグリホサート系除草剤耐性を有さない、請求項30に記載の方法。グリホサート系除草剤の施用に耐性のあるアブラナ属植物を生成する方法であって、a事象MON88302を含むグリホサート耐性事象アブラナ属植物を自家受粉させて、これにより種子を生成するステップと、b前記種子を生育させて複数の後代植物を生長させるステップと、c事象MON88302を含む後代植物を選択するステップとを含む、方法。事象MON88302植物または種子の接合状態を決定する方法であって、a事象MON88302由来のゲノムDNAとの核酸増幅反応において使用されるときに、事象MON88302に特徴的な第1のアンプリコンを生成する配列番号:12、配列番号:13および配列番号:14を含むプライマーセットに、DNAを含む試料を接触させるステップと、b核酸増幅反応を行って、これにより前記第1のアンプリコンを生成するステップと、c前記第1のアンプリコンを検出するステップと、d植物からのゲノムDNAとの核酸増幅反応に用いられるときに、事象MON88302であると同定された導入遺伝子挿入のゲノム領域と相同的な天然のゲノムDNAを含む第2のアンプリコンを生成する前記プライマーセットに、DNAを含む前記試料を接触させるステップと、e核酸増幅反応を行って、これによって前記第2のアンプリコンを生成するステップと、f前記第2のアンプリコンを検出するステップと、g試料中で前記第1および第2のアンプリコンを比較するステップとを含み、両アンプリコンの存在が、前記試料が導入遺伝子挿入に対してヘテロ接合性であることを示す、方法。本発明は、その代表的な種子サンプルが米国培養細胞系統保存機関ATCCに受入番号PTA-10955で寄託された、事象MON88302を含む遺伝子組換え植物および種子を提供する。事象MON88302を含む植物は、グリホサート系除草剤の施用に対して商業上許容可能な耐性を示す。本発明は、事象MON88302を含む後代植物、植物器官および細胞、事象MON88302に関連する組換えDNA分子およびこれら分子の使用方法、事象MON88302に由来するか事象MON88302を含む商用産物、ならびに事象MON88302の使用方法を提供する。本発明は、事象MON88302を含む植物、種子、細胞、後代植物、または植物器官、および事象MON88302を含む植物、細胞、植物器官または種子に由来する商用産物を提供する。ひいては、本発明は配列番号:1、配列番号:2、配列番号:3、配列番号:4、配列番号:6、配列番号:7および配列番号:8からなる群より選択されるヌクレオチド配列およびそのフラグメントを有するDNA分子を含む植物、種子、細胞、後代植物、植物器官または商用産物を提供する。本発明は、例えばDNA増幅方法において、本発明のDNA分子を含むアンプリコンを生成する組換えDNA分子を含む植物、種子、細胞、後代植物または植物器官を提供する。本発明は、事象MON88302に関係するDNA分子を提供する。これらのDNA分子は、事象MON88302の導入遺伝子インサートおよびフランキングゲノムDNA間の結合、および/または挿入DNAに隣接するゲノムDNAの領域、および/または挿入部位に隣接する組込み遺伝子組換えDNAの領域、および/または組込み遺伝子組換え発現カセットの領域、および/またはこれらの領域のいずれかの近接配列を表すかまたはそれらに由来するヌクレオチド配列を含み得る。また、本発明は、アブラナ事象MON88302に特徴的なプライマーおよびプローブとして有用なDNA分子を提供する。これらの分子を含む植物、細胞、植物器官、商品、後代および種子を提供する。本発明は、事象MON88302に由来したDNAの存在を検出するのに有用な方法、組成物およびキットを提供する。本発明は、DNAを含む試料と、事象MON88302からのゲノムDNAとの核酸増幅反応に用いたときに事象MON88302に特徴的なアンプリコンを生成するプライマーセットとを接触させ、核酸増幅反応を行い、それによりアンプリコンを生成し、このアンプリコンを検出することによる事象MON88302の検出方法を提供する。また、本発明は、DNAを含む試料と、事象MON88302からのゲノムDNAとのハイブリダイゼーション反応に用いた場合に事象MON88302に特異的なDNA分子にハイブリダイズするプローブとを接触させ、ハイブリダイゼーション反応を行い、次いで、DNA分子へのプローブのハイブリダイゼーションを検出することによる事象MON88302の検出方法を提供する。また、事象MON88302に由来したDNAの存在を検出するのに有用な本発明の方法および組成物を含むキットを提供する。本発明は、事象MON88302を含む植物を植え付けすなわち、事象MON88302を含む種子の播種、次いで、事象MON88302を含む植物を害することなく雑草を防除することのできる有効量のグリホサートを施用することによって圃場の雑草を防除する方法を提供する。本発明は、事象MON88302を含むか、または配列番号:1、配列番号:2、配列番号:3、配列番号:4、配列番号:6、配列番号:7および配列番号:8からなる群より選択される配列を含むグリホサート耐性植物と第2の植物とを交配し、それによって種子を生成し、その種子を生育させて後代植物を生成し、その後代植物をグリホサートで処理し、事象MON88302を含みかつグリホサート耐性のある後代植物を選択することによる、グリホサート除草剤の施用に耐性である植物および/または種子の生成方法を提供する。本発明は、事象MON88302を含むか、または配列番号:1、配列番号:2、配列番号:3、配列番号:4、配列番号:6、配列番号:7および配列番号:8からなる群より選択される配列を含むグリホサート耐性植物を自家受粉し、それによって種子を生成し、その種子を生育させて後代植物を生成し、その後代植物をグリホサートで処理し、事象MON88302を含みかつグリホサート耐性のある後代植物を選択することによる、グリホサート除草剤の施用に耐性である植物および/または種子の生成方法を提供する。本発明は、DNAを含む試料を、事象MON88302からのゲノムDNAとの核酸増幅反応において使用されるときに事象MON88302に特徴的なアンプリコンを生成する第1のプライマーセットと接触させ、核酸増幅反応を行い、これによってアンプリコンを生成し、そのアンプリコンを検出し、植物からのゲノムDNAとの核酸増幅反応において用いられるときに事象MON88302と同定された導入遺伝子インサートのゲノム領域と相同性の天然nativeのゲノムDNAを含む第2のアンプリコンを生成する第2のプライマーセットと試料を接触させ、核酸増幅反応を行い、これによって第2のアンプリコンを生成し、この第2のアンプリコンを検出し、試料中で第1と第2のアンプリコンを比較することによって、事象MON88302を含む植物または種子の接合状態を決定する方法を提供し、ここにおいて、両方のアンプリコンが存在していることが、その試料、ひいてはその植物または種子が導入遺伝子インサートとヘテロ接合性であることを示す。本発明の前記および他の態様は、以下の詳細な記載からより明白になるであろう。以下の定義および方法は、本発明をより良好に定義し、本発明の実施において当業者を導くために提供するものである。特記しない限りは、用語は、関連技術分野における当業者により従来の用法に従って理解されるべきである。本明細書に用いた含むなる用語は、限定されるものではないが、~を含むを意味する。本発明は、遺伝子組換え事象MON88302を提供する。本明細書で用いる事象なる用語は、植物のゲノムの染色体上の特定の場所に遺伝子組換えDNAを挿入した結果として生成されるDNA分子をいう。事象MON88302とは、配列番号:5として本明細書に記載した配列を有する遺伝子組換えDNAがセイヨウアブラナ属のAゲノムの結合基linkagegroupN4の特定の場所に挿入された結果生じるDNA分子をいう。本発明では事象MON88302を含む植物および種子も提供される。MON88302を含む種子試料は寄託番号PTA-10955で米国培養細胞系統保存機関ATCCに寄託されている。MON88302を含む植物はグリホサート系除草剤の施用に対して商業上許容可能な耐性を示す。その事象を含む植物とは、植物ゲノムの特定の位置に挿入された導入遺伝子を含む元の形質転換体ということができる。その事象を含む植物は、植物ゲノムの特定の位置に挿入された導入遺伝子を含む元の形質転換体の後代ともいえる。かかる後代は、自家受粉によるか、あるいは形質転換体またはその後代と別の植物との間の性的交配により生成し得る。かかる他の植物は、同一または異なる導入遺伝子を含む遺伝子組換え植物および/または非遺伝子組換え植物例えば、異なる品種からのものであり得る。反復親への戻し交配を繰り返した後であっても、形質転換した親からの挿入されたDNAおよびフランキングDNAは、同一のゲノム位置での交配の後代に存在する。遺伝子組換え事象MON88302は、セイヨウアブラナ植物のAゲノムの結合基N4に遺伝子組換えDNA本明細書では配列番号:5として記載を挿入することによって創製した。セイヨウアブラナは一般にナタネとして知られており、特定の品種をキャノーラと呼ぶこともある。本明細書で用いる用語キャノーラまたはキャノーラ植物とはキャノーラ油すなわち、2未満のエルカ酸を含有する特定の品質指定を満たす油を製造するのに使用できるアブラナ属植物を指し、種々のセイヨウアブラナ、ルタバガ、カブ、カラシナおよびハクサイが挙げられる。セイヨウアブラナはカブ以前のハクサイおよびブラッシカオレラセアBrassicaoleracea両方のゲノムの交雑および保持から生じる異質4倍体であるため、遺伝子組換え事象MON88302を含むセイヨウアブラナ植物を育種方法と一緒に用いて、他のアブラナ属のメンバーにMON88302事象を導入し得るし、ひいてはグリホサート耐性形質を導入し得る。本発明の方法の実施に有用なアブラナ属のメンバーの例には、限定するものではないが、カラシナ、ルタバガ、ブラッシカオレラセア、Brassicacarinata、セイヨウアブラナ、カブおよびハクサイのほか、アブラナ属間で育種を可能にするアブラナ属に属する他のあらゆる植物を含む。事象MON88302を含むDNA分子とは、挿入された遺伝子組換えDNA配列番号:5として記載の少なくとも一部およびその挿入されたDNAの直近のフランキングゲノムDNAの少なくとも一部を含むDNA分子をいう。それ自体、事象MON88302を含むDNA分子は、遺伝子組換えDNAインサートの少なくとも一部およびその遺伝子組換えDNAが挿入された植物のゲノムの特定の領域の少なくとも一部を表すヌクレオチド配列を有する。周囲の植物ゲノムに関連した事象MON88302において挿入されたDNAの配置は事象MON88302に特異的かつ固有であり、したがって、かかるDNA分子のヌクレオチド配列は事象MON88302に特徴的で固有である。そういったDNA分子の配列の例を本明細書では配列番号:1、配列番号:2、配列番号:3、配列番号:4、配列番号:6、配列番号:7および配列番号:8として記載する。このDNA分子は、事象88302を含み、植物の後代に伝え得る植物の染色体の不可欠な部分でもある。事象MON88302は、植物に施用されるグリホサート除草剤に対する耐性を付与する。グリホサートはN-ホスホノメチル-グリシンおよびその塩をいう。グリホサートは広範囲の植物種に対する活性を有する除草剤である。植物表面に施用された場合、グリホサートは植物の全身に移動する。グリホサートは芳香族アミノ酸の合成のための前駆体を提供するシキミ酸経路をそれが抑制するために植物毒素である。本明細書に用いた組換え体なる用語は、通常天然に見出されず、かつそれ自体がヒト介在によって創製されたDNAおよび/またはタンパク質および/または有機体の形態をいう。かかるヒト介在は、組換えDNA分子および/または組換え植物を生成し得る。本明細書に用いた組換えDNA分子は、天然には一緒に発生せず、ヒト介在の結果であるDNA分子の組合せを含むDNA分子、例えば、互いに異種の少なくとも2つのDNA分子の組合せを含むDNA分子および/または人工的に合成され、通常は天然に存在するポリヌクレオチド配列から逸脱するポリヌクレオチド配列を含むDNA分子および/または宿主細胞のゲノムDNAおよび宿主細胞のゲノムの関連するフランキングDNAに人工的に組み込まれた導入遺伝子を含むDNA分子である。組換えDNA分子の一例は、セイヨウアブラナゲノムへの導入遺伝子の挿入に起因して、本明細書に記載されたDNA分子であり、それは最終的には、その有機体中の組換えRNAおよび/または蛋白分子の発現を生じさせ得る。本明細書に用いた組換え植物は、通常は天然に存在しない植物であり、ヒト介在の結果であり、導入遺伝子および/またはそのゲノムに組み込まれた異種のDNA分子を含む。かかるゲノムの改変の結果、遺伝子組換え植物は、関連する野生型植物とは明確に異なる。組換え植物の一例は、事象MON88302を含むものとして本明細書に記載された植物である。本明細書に用いた導入遺伝子なる用語は、宿主細胞のゲノムに人工的に組み込まれたポリヌクレオチド分子をいう。かかる導入遺伝子は、宿主細胞に異種であり得る。遺伝子組換え植物なる用語は、かかる導入遺伝子を含む植物をいう。本明細書に用いた異種なる用語は、第2の分子と組み合わせて天然には通常見出されない第1の分子をいう。例えば、分子は、第1の種に由来し、第2の種のゲノムに挿入され得る。かくして、分子は、宿主に異種であり、宿主細胞のゲノムに人工的に組み込まれるであろう。本明細書に用いたキメラなる用語は、第2のDNA分子に第1のDNA分子を融合させることにより生成された単一のDNA分子をいい、ここに、第1のDNA分子も第2のDNA分子も、その配置、すなわち、他方に融合されたもので通常見出されないであろう。かくして、キメラDNA分子は通常天然に見出されない限りは新しいDNA分子である。本発明は、DNA分子およびそれらの対応するヌクレオチド配列を提供する。本明細書に用いた用語DNA配列、ヌクレオチド配列およびポリヌクレオチド配列は、通常は5’上流末端から3’下流末端に存在するDNA分子のヌクレオチドの配列をいう。本明細書に用いた命名法は、米国連邦規則集第37巻第1.822条によって必要とされ、WIPO標準ST.251998、付属書2の表1および3の表に記載されたものである。本発明は、遺伝子組換え事象MON88302に提供される2つのヌクレオチド配列鎖の1つの鎖のみを参照して開示される。したがって、含意および派生によって、当該技術分野において完全な相補体または逆方向の相補的配列といわれる相補的配列も本発明の範囲内にあり、したがって、特許請求された主題の範囲内にあることも意図される。挿入された遺伝子組換えDNAおよびその挿入された遺伝子組換えDNAのいずれかの末端に隣接するセイヨウアブラナゲノムDNAの実質的セグメントの完全なヌクレオチド配列に対応するヌクレオチド配列を本明細書では配列番号:6と記載する。このサブセクションは、配列番号:5として記載した挿入された遺伝子組換えDNAである。挿入された遺伝子組換えDNAの5’末端およびその挿入されたDNAの5’末端の一部に隣接するゲノムDNAのヌクレオチド配列を本明細書では配列番号:3として記載する。挿入された遺伝子組換えDNAの3’末端またはその挿入されたDNAの3’末端の一部に隣接するゲノムDNAのヌクレオチド配列を本明細書では配列番号:4として記載する。遺伝子組換えDNAがゲノムDNAに繋がり、かつゲノムDNAと結ばれた場所に亘る領域を本明細書では結合という。結合配列または結合領域とは、挿入された遺伝子組換えDNAおよび隣接したフランキングゲノムDNAに亘るDNA配列および/または対応するDNA分子をいう。事象MON88302の結合配列の例を本明細書では配列番号:1、配列番号:2、配列番号:7および配列番号:8と記載する。アブラナ属植物または種子に由来するヌクレオチド分子中のこれら結合配列のうちの1つを同定することで、事象MON88302から得られたものであり、事象MON88302からのDNAの試料中の存在に特徴的であることが確認される。配列番号:1は、ゲノムDNAと挿入されたDNAの5’末端との間の結合に亘る60ヌクレオチド配列である。配列番号:7は、ゲノムDNAと挿入されたDNAの5’末端との間の結合に亘る100ヌクレオチド配列である。配列番号:2は、ゲノムDNAと挿入されたDNAの3’末端との間の結合に亘る60ヌクレオチド配列である。配列番号:8は、ゲノムDNAと挿入されたDNAの3’末端との間の結合に亘る100ヌクレオチド配列である。配列番号:1または配列番号:7を含む遺伝子組換え事象MON88302に由来するDNAのどのようなセグメントも本発明の範囲内にある。配列番号:2または配列番号:8を含む遺伝子組換え事象MON88302に由来するDNAのどのようなセグメントも本発明の範囲内にある。また、本パラグラフに記載の配列のいずれかに相補的な配列を含むどのようなポリヌクレオチドも本発明の範囲内にある。図1は、5’~3’に配置された配列番号:6に対し、配列番号:1~5および配列番号:7~8の物理的な配置を示す。また、本発明は、配列番号:6の完全長に少なくとも95、96、97、98または99同一であるDNA分子を含む核酸分子を提供する。本発明は、試料中の事象MON88302由来のDNAの存在を確かめるためのプライマーまたはプローブのいずれかとして使用することができる例示的なDNA分子を提供する。そういったプライマーまたはプローブは、標的核酸配列に特異的であり、それ自体が本明細書に記載の本発明の方法による事象MON88302核酸配列の同定に有用である。プライマーとは、典型的には、熱増幅を含む特定のアニーリングまたはハイブリダイゼーション方法における使用のために設計される高度に精製され単離されたポリヌクレオチドである。プライマー対は、ポリメラーゼ連鎖反応PCRのごとき熱増幅におけるセイヨウアブラナゲノムDNAの試料のごときテンプレートDNAと共に用いて、かかる反応から生成したアンプリコンが、プライマーがテンプレートにハイブリダイズした場合に2つの部位間に位置したテンプレートDNAの配列に対応するDNA配列を有する場合にアンプリコンを生成し得る。本明細書に用いたアンプリコンは、増幅技術を用いて合成されたDNAの一片または断片すなわち、増幅反応の産物である。本発明の1実施形態において、事象MON88302に特徴的なアンプリコンは、セイヨウアブラナゲノム中で天然に見出されない配列を含む。本発明のアンプリコンは、配列番号:1または配列番号またはその相補体の少なくとも約40の隣接ヌクレオチドを含む。プライマーは、典型的には、相補的な標的DNA鎖にハイブリダイズして、プライマーと標的DNA鎖との間のハイブリッドを形成するように設計され、プライマーの存在は、テンプレートとして標的DNA鎖を用いるプライマーの伸長すなわち、延長するポリヌクレオチド分子へのさらなるヌクレオチドの重合を始めるポリメラーゼによる認識ポイントである。本発明に用いたプライマー対は、典型的には、熱増幅反応または他の従来の核酸増幅方法において、プライマー対の個々のメンバーによって結合するための標的とされた位置間にポリヌクレオチドセグメントを直線的に増幅する目的で、2本鎖のヌクレオチドセグメントの反対の鎖に結合する2つのプライマーの使用をいうように意図される。プライマーとして有用な典型的なDNA分子は、配列番号:9~10として提供される。配列番号:9および配列番号:10として提供されるプライマー対は、第1のDNA分子、および第1のDNA分子とは異なる第2のDNA分子として提供され得、両分子はそれぞれ、セイヨウアブラナ事象MON88302に由来したテンプレートDNAと熱増幅反応に一緒に用いて、遺伝子組換え事象MON88302の3’部分に特異的かつ固有のアンプリコンが生成されるときにDNAプライマーとして機能するように、配列番号:4、配列番号:5または配列番号:6あるいはその相補対のいずれかの十分な長さの隣接したヌクレオチドである。この例示的なプライマー対を用いて事象MON88302に特徴的な3’結合領域を増幅し得る。また、本発明は、事象MON88302に特徴的な5’結合領域を増幅するのに使用し得るプライマー対を提供する。かかるプライマーは、第1のDNA分子およびこの第1のDNA分子とは異なる第2のDNA分子を含み得る、その両方は、事象MON88302に由来したテンプレートDNAと熱増幅反応に一緒に用いて、遺伝子組換え事象MON88302の5’部分に特異的かつ固有のアンプリコンが生成されるときにDNAプライマーとして機能するように、配列番号:3、配列番号:5または配列番号:6あるいはその相補対の十分な長さの隣接したヌクレオチドである。プローブは、標的核酸の鎖に相補的である単離された核酸である。本発明によるプローブは、デオキシリボ核酸またはリボ核酸だけでなく、ポリアミドおよび標的DNA配列に特異的に結合する他のプローブ物質も含み、かかる結合の検出は、特定の試料中のその標的DNA配列の存在を分析、識別、決定または確認するのに有用であることができる。プローブは、従来の検出可能な標識またはリポーター分子、例えば、放射性同位体、リガンド、化学発光剤または酵素に結合し得る。本発明の1つの具体例において、事象MON88302に特徴的なプローブは、セイヨウアブラナゲノムにおいて天然に見出されない配列を含む。プローブとして有用な典型的なDNA分子は配列番号:11として提供される。本発明によるプローブおよびプライマーは、標的配列と完全な配列同一性を有することができるが、標的配列に優先的にハイブリダイズする能力を保持する標的配列とは異なるプライマーおよびプローブも、従来方法によって設計され得る。核酸分子がプライマーまたはプローブとして機能するために、使用した特定の溶媒および塩濃度下で安定な2本鎖構造を形成できるために、配列における十分に相補的であることだけを必要とする。いずれの通常の核酸ハイブリダイゼーションまたは増幅方法を用いても、試料中の事象MON88302からの遺伝子組換えDNAの存在を同定できる。プローブおよびプライマーは、長さが一般的に少なくとも約11以上のヌクレオチド、少なくとも約18以上のヌクレオチド、少なくとも約24以上のヌクレオチドまたは少なくとも約30以上のヌクレオチドである。かかるプローブおよびプライマーは、ストリンジェントなハイブリダイゼーション条件下で標的DNA配列に特異的にハイブリダイズする。通常のストリンジェンシー条件は、Sambrookら1989年およびHaymesらのNucleicAcidHybridization,APracticalApproach,IRLPress,Washington、DC1985年により記載されている。本明細書に用いた2つの核酸分子は、その2つの分子が逆平行の2本鎖核酸構造を形成できるならば、相互に特異的にハイブリダイズできると言われる。核酸分子は、それらが完全な相補性を示すならば、もう一つの核酸分子の相補体であると言われる。本明細書に用いた分子は、一方の分子のすべてのヌクレオチドが他方のヌクレオチドに相補的である場合に、完全な相補性を示すと言われる。2つの分子が、それらが少なくとも通常の低ストリンジェンシー条件下でそれらが相互にアニーリングされたままとするのを可能とするように十分な安定性で相互にハイブリダイズできるならば、最小に相補的であると言われる。同様に、分子は、それらが通常の高ストリンジェンシー条件下でそれらが相互にアニーリングされたままとするのを可能とするように十分な安定性で相互にハイブリダイズできるならば、相補的であると言われる。したがって、完全な相補性からの逸脱は、かかる逸脱が2本鎖構造を形成する分子の能力を完全に除外しない限りは、許容可能である。本明細書に用いた単離されたなる用語は、そのネイティブまたは天然状態においてそれに通常関連する他の分子から少なくとも部分的に分子を分離することをいう。1つの実施形態において、単離されたなる用語は、そのネイティブまたは天然状態においてDNA分子に通常隣接する核酸から少なくとも部分的に分離されたDNA分子をいう。かくして、例えば、組換え技術の結果としての通常関連しない調節またはコード配列に融合したDNA分子は、本明細書において単離されたと考えられる。かかる分子は、宿主細胞の染色体に組み込まれたか、または他のDNA分子を含む核酸溶液中に存在する場合でさえ、単離されたと考えられる。当業者によく知られた多数の方法を用いて、本発明に開示されるDNA分子またはその断片を単離および操作できる。例えば、PCRポリメラーゼ連鎖反応技術を用いて、特定の出発DNA分子を増幅でき、および/または元来の分子の変異体を生成できる。また、DNA分子またはその断片は、化学的手段によって直接的に断片を合成することによってのごとく、他の技術によって得ることができ、自動オリゴヌクレオチドシンセサイザーの使用により一般的に実行される。したがって、本明細書に提供されるDNA分子および対応するヌクレオチド配列は、特に、事象MON88302を同定する、事象MON88302を含む植物品種または雑種を選択する、試料中の事象MON88302に由来したDNAの存在を検出する、および事象MON88302または事象MON88302を含む植物および植物器官の存在および/または不存在につき試料をモニタリングするのに有用である。本発明は、植物、後代、種子、植物細胞、植物器官例えば、花粉、胚珠、鞘、花、根または茎組織、繊維および葉および商品を提供する。これらの植物、後代、種子、植物細胞、植物器官および商品は、本発明の検出可能な量のポリヌクレオチド、すなわち、配列番号:1、配列番号:2、配列番号:7または配列番号:8として供される配列の少なくとも1つを有するポリヌクレオチドを含む。また、本発明の植物、後代、種子、植物細胞および植物器官は、1以上のさらなる導入遺伝子を含み得る。かかる導入遺伝子は、限定されるものではないが、耐虫性の増加、水使用効率の増加、収率効率の増加、耐乾燥性の増加、種子品質の向上、病害耐性、栄養価の改善および/または除草剤耐性の増加を含めた望ましい形質を与えるタンパク質をコードするいずれかのヌクレオチド配列またはRNA分子であり得、ここに、その望ましい形質は、かかるさらなる導入遺伝子を欠く同等な植物に関して測定される本発明は、事象MON88302を含む遺伝子組換え植物に由来した植物、後代、種子、植物細胞、ならびに花粉、胚珠、鞘、花、根または茎組織、および葉のごとき植物器官を提供する。事象MON88302を含む種子の代表的試料は、本発明を可能にする目的でブダペスト条約により寄託されている。その寄託を受けるために選択された貯蔵所は、郵便番号20110、米国バージニア州マナッサス10801UniversityBoulevardの住所を有する米国培養細胞系統保存機関ATCCである。そのATCC貯蔵所は、事象MON88302種子に受入番号PTA-10955を割り当てた。本発明は、そのゲノム中に存在する配列番号:1、配列番号:2、配列番号:7または配列番号:8を有するDNA分子を含む微生物を提供する。かかる微生物の例は、遺伝子組換え植物細胞である。本発明の植物細胞のごとき微生物は、限定されるものではないが、以下を含めて多数の産業上の適用に有用である:i科学研究または産業調査用の研究ツールとしての使用;ii引き続いての科学的調査または工業製品として用い得る内因性または組換え炭水化物、脂質、核酸もしくは蛋白質製品を生成する小分子のための培養での使用;およびiii農業の研究または生成に次いで用い得る遺伝子組換え植物または植物組織培養物を生成する現代の植物組織培養技術での使用を含めて多数の産業適用に有用である。遺伝子組換え植物細胞のごとき微生物の生成および使用は、現代の微生物学技術およびヒト介在を利用して、人工のユニークな微生物を生成する。このプロセスにおいて、組換えDNAを植物細胞のゲノムに挿入して、自然発生の植物細胞から分離および特有である遺伝子組換え植物細胞を創製する。次いで、この遺伝子組換え植物細胞は、現代の微生物学技術を用いて細菌および酵母細胞のように培養することができ、未分化の単細胞状態で存在し得る。新しい植物細胞の遺伝子組成および表現型は、細胞のゲノムへの異種DNAの組み込みによって創製された技術的効果である。本発明のもう一つの態様は、本発明の微生物の使用方法である。遺伝子組換え植物細胞のごとき本発明の微生物の使用方法は、i細胞のゲノムへ組換えDNAを組み込み、次いで、細胞を用いて、同じ異種DNAを所有するさらなる細胞を得ることによる遺伝子組換え細胞を生成する方法;ii現代の微生物学技術を用いて、組換えDNAを含む細胞を培養する方法;iii培養細胞から内因性もしくは組換え炭水化物、脂質、核酸または蛋白質製品を生成し精製する方法;およびiv遺伝子組換え植物または遺伝子組換え植物組織培養物を生成するための遺伝子組換え植物細胞での現代の植物組織培養技術を使用する方法を含む。本明細書に用いた後代は、いずれの植物、種子、植物細胞および/または祖先植物に由来した事象DNAおよび/または配列番号:1、配列番号:2、配列番号:7または配列番号:8として提供される少なくとも1つの配列を有するポリヌクレオチドを含む再生可能な植物器官を含む。植物、後代および種子は、導入遺伝子にホモ接合性またはヘテロ接合性であり得る。後代は事象MON88302を含む植物により生成された種子、および/または事象MON88302を含む植物からの花粉で受精された植物によって生成された種子から生育し得る。後代植物は、自家受粉自配としても知られているして、植物、すなわち、導入遺伝子にホモ接合性の植物の真の生育系を生成する。適切な後代の自家受粉は、双方の追加された外来性遺伝子にホモ接合性である植物を生成できる。別法として、後代植物は、他家交配、例えば、もう一つの無関係な植物で生育させて、変種または雑種の種子または植物を生成し得る。他の無関係な植物は、遺伝子組換えまたは非遺伝子組換えであり得る。かくして、本発明の変種または雑種種子または植物は、MON88302の特異的かつ固有のDNAを欠く第1の親と、MON88302を含む第2の親とを交配させることにより誘導する結果、MON88302の特異的かつ固有のDNAを含む雑種を生じ得る。各親は、その交配または生育が、本発明の植物または種子、すなわち、MON88302および/または配列番号:1および配列番号:2の特異的かつ固有のDNAを含有する少なくとも1つの対立遺伝子を有する種子において生じる限りは、雑種または生来/変種であることができる。かくして、2つの異なる遺伝子組換え植物を交配させて、2つの独立して分離するさらなる外来性遺伝子を含む雑種子孫を生成し得る。例えば、事象MON88302を含むグリホサート耐性植物を他の遺伝子組換えイネ植物と交配させて、双方の遺伝子組換え親の特性を有する植物を生成できる。この1つの例は、1以上のさらなる形質を有するアブラナ属植物カラシナまたはキャノーラなどとの事象MON88302を含むグリホサート耐性アブラナ属植物の交配であり、その結果、グリホサートに耐性であり、1以上のさらなる形質を有する後代の植物または種子を生じるであろう。所望の遺伝子組換え形質を有するアブラナ属植物は当該技術では公知であり、限定するものではないが、除草剤耐性を有する形質を有するアブラナ属植物例えば、事象RT200、事象RT73、事象MS1、事象RF1、事象RF2、Topas19/2、MS8、RF3、T45、ハイブリッド育種系または繁殖fertility系例えば、事象MS1、事象MS8、事象RF1、事象RF2、事象Rf3、昆虫防除、増強された収率、病害耐性例えば、Sclerotinia属耐性、根朽ち病耐性、根こぶ病耐性、立ち枯れ病耐性、改変または増強された油組成例えば、事象pCGN3828-212/86-18、事象pCGN3828-212/23、例えば公的に利用可能な米国農務省USDA動植物衛生検査部APHISのPetitionsforNonregulatedStatusのリストに記載されているものすべてが含まれる。所望の非遺伝子組換え形質を有するアブラナ属植物が当該技術では公知であり、限定するものではないが、除草剤耐性例えば、イミダゾリン耐性の1471、イミダゾリン耐性のCLB-1、トリアジン耐性のTTC、病原体性、昆虫防除、増強された収率、病害耐性例えば、Sclerotinia属耐性、根朽ち病耐性、根こぶ病耐性、立ち枯れ病耐性、改変または増強された油組成例えば、低リノレン酸および/または高オレイン酸、改変された化学的および/または栄養組成、改変されたタンパク質組成、冷温耐性、渇水耐性、改変された成熟期および/または開花期およびその他の改変または改良された農学的性質といった形質が含まれる。また、親植物への戻し交配および非遺伝子組換え植物との他家交配は、栄養繁殖であると考えられる。異なる形質および作物に一般的に用いる他の育種方法の記載は、いくつかの引用文献の1つ、例えば、Fehr,BreedingMethodsforCultivarDevelopment,WilcoxJ.ed.,AmericanSocietyofAgronomy,ウィスコンシン州マディソン所在1987に見出すことができる本発明は、事象MON88302を含む植物に由来する植物器官を提供する。本明細書に用いた植物器官とは、事象MON88302を含む植物に由来した物質を含む植物のいずれかの器官をいう。植物器官は、限定されるものではないが、花粉、胚珠、鞘、花、根もしくは茎組織、繊維および葉を含む。植物器官は、生存、非生存、再生可能および/または再生不能であり得る。本発明は、事象MON88302を含む植物に由来する商品を提供する。本明細書に用いた商品とは、事象MON88302を含む植物、種子、植物細胞または植物器官に由来した物質を含むいずれかの組成物または生成物をいう。商品は消費者に販売でき、生存または非生存であり得る。非生存商品は、限定されるものではないが、非生存種子および粒;加工された種子、種子部分および植物器官;脱水された植物組織、冷凍植物組織および加工された植物組織;陸生および/または水生動物消費用の動物飼料、ヒト消費用の油、食事、小麦粉、フレーク、糠、繊維および他のあらゆる食物のために加工された種子および植物器官;バイオマスおよび燃料生成物を含む。生存商品は、限定されるものではないが、種子および植物細胞を含む。事象MON88302を含む植物を用いて、アブラナから典型的に獲得されるいずれの商品も製造できる。事象MON88302を含む植物から由来するいずれのかかる商品も、事象MON88302に対応する少なくとも検出可能な量の特有でユニークなDNAを含むこともでき、具体的には、配列番号:1および配列番号:2の少なくとも40の隣接ヌクレオチドを含有する検出可能な量のポリヌクレオチドを含み得る。本明細書に開示された検出方法を含めて、ポリヌクレオチド分子についての検出のいずれの標準的な分析法も用い得る。商品は、商品中にいずれかの検出可能な量の配列番号:1または配列番号:2が存在するならば、本発明の範囲内にある。したがって、本発明の植物、後代、種子、植物細胞、植物器官例えば、花粉、胚珠、鞘、花、根または茎組織および葉および商品は、特に、農業の目的のための事象MON88302を含む種子および/または植物器官を生成する目的で植物を生育する、植物育種および研究目的のための事象MON88302を含む後代を生成する、産業および研究適用についての微生物学技術での使用、および消費者への販売に有用である。本発明は、圃場における雑草の防除方法を提供する。事象MON88302を含む植物を圃場に植え付け、MON88302を含む植物を損傷させることなく、圃場の雑草防除のために少なくとも1つの除草有効量のグリホサートを圃場に散布することから成る雑草防除法を提供する。また、少なくとも1つの除草有効量のグリホサートを雑草防除のために圃場に散布し、次いで、事象MON88302を含む作物をその圃場に植え付けることから成る圃場の雑草防除のための別の方法を提供される。本発明の方法は単独で用いても併用してもよい。グリホサートの施用は、植え付け前すなわち、事象MON88302を含む種子の播種前の任意の時点で、限定するものではないが、播種の約14日前~播種の約1日前あるいは事象MON88302を含む種子の播種と同時を含む、出芽前すなわち、事象MON88302を含む種子を播種後および事象MON88302含む植物が出芽する前の任意の時点および/または出芽後すなわち、事象MON88302を含む植物が出芽した後の任意の時点であってよい。本発明の方法を実施する際、グリホサートの複数の施用、例えば、2回施用例えば、播種前施用および出芽後施用、または出芽前施用および出芽後施用または3回の施用例えば、播種前施用、出芽前施用および出芽後施用を栽培期に亘り用い得る。かくして、栽培期に亘って施用されるグリホサートの合計回数は、1以上の期内での施用を含み得、複数回の期内の施用の合計を一緒に加えてグリホサートの全施用となる。本明細書で用いる場合、雑草の生長をコントロールするのに有効なグリホサートの量すなわち、圃場において雑草の成長をコントロールするために作物内での施用として圃場内で使用するグリホサートの除草有効量は、栽培期全体を通じて1エーカー当たり約0.125ポンドのグリホサート~1エーカー当たり約6.4ポンドのグリホサートの範囲から構成されるべきである。例えば、作物内での施用として圃場で使用するグリホサートの除草有効量は、栽培期全体をと通じて1エーカー当たり少なくとも約0.125、約0.5、約1.0、約1.6、約2.0、約2.5、約3.0、約3.5、約4.0、約4.5、約5.0、約5.5、約6.0または約6.4ポンドであり得る。事象MON88302を含む除草剤耐性の植物の生成方法が提供される。これらの方法に用いた遺伝子組換え植物は、導入遺伝子にホモ接合性またはヘテロ接合性であり得る。これらの方法によって生成された後代植物は、変種または雑種植物であり得;植物によって生成された種子、および/または事象MON88302を含む植物からの花粉で受精された植物によって生成された事象MON88302を含む種子から生育でき;および導入遺伝子にホモ接合性またはヘテロ接合性であり得る。引き続いて、後代植物を自家受粉して、真の生育系の植物、すなわち、導入遺伝子にホモ接合性の植物を生成するか、あるいは、他家交配、例えば、もう一つの無関係の植物と生育して、変種もしくは雑種種子または植物を生成し得る。グリホサート除草剤の施用に耐性である植物は、配列番号:1および配列番号:2の配列を含むポリヌクレオチド分子を含む事象MON88302を含む植物ともう一つの植物とを性的交配し、それにより、種子を生成し、次いで、これを後代植物に生育することにより生成し得る。次いで、これらの後代植物はグリホサート除草剤で処理して、グリホサート除草剤に耐性である後代植物を選択し得る。別法として、これらの後代植物を分析法を用いて分析して、事象MON88302DNAを含む後代植物を選択し得る。交配に用いた他の植物は、グリホサート除草剤に耐性であっても、耐性でなくともよく、遺伝子組換えであってもなくてもよい。生成された後代植物および/または種子は、変種または雑種種子であり得る。本方法の実施において、1つの植物ともう一つの植物とを性的交配する、すなわち、他家交配する工程は、ヒト介在、例えば、ヒトの手により、1つの植物の花粉を集めて、この花粉と第2の植物の花柱または柱頭とを接触させる;ヒトの手および/またはヒトの行為により、天然の自家受粉を防止し、他家交配が、受精が生じるように発生するにちがいないように例えば、手作業による介入または化学的ガメトサイドの適用により植物の雄しべまたは葯を除去、破壊またはカバーする;指令された受粉についての位置における受粉用昆虫のヒト配置によって例えば、果樹園または圃場にミツバチの巣を配置することによって、または受粉用昆虫を含む植物をかごに入れることによって;ヒトにより、花の器官を咲かせるかまたは除去して、花柱または柱頭上で外来性の花粉の配置または接触を可能とする;植物の選択的な配置例えば、受粉近傍において意図的に植物を植えるによって;および/または開花を誘発するまたは花粉用の柱頭の感受性を促進する化学薬品の適用によって達成または促進し得る。グリホサート除草剤の施用に耐性である植物は、配列番号:1および配列番号:2の配列を含むポリヌクレオチド分子を含む事象MON88302を含む植物を自家受粉し、それにより、種子を生成し、次いで、後代植物に生育することによって生成され得る。次いで、これらの後代植物をグリホサート除草剤で処理して、グリホサート除草剤に耐性である後代植物を選択し得る。別法として、これらの後代植物は、分析方法を用いて分析して、事象MON88302DNAを含む後代植物を選択し得る。この方法を実施することにおいて、ある植物とそれ自体とを性的交配する、すなわち、自家受粉または自配する工程は、ヒト介在、例えば、ヒトの手により、植物の花粉を集めて、この花粉と同一の植物の花柱または柱頭とを接触させ、次いで、所望により、植物のさらなる受精を防止する;ヒトの手および/または行為により、天然の自家受粉を防止し、他家交配が、受精が生じるように発生するにちがいないように例えば、雄穂除去、または化学的ガメトサイドの適用による他の付近の植物の雄しべまたは葯を除去、破壊またはカバーする;指令された受粉についての位置における受粉用昆虫のヒト配置によって例えば、受粉用昆虫を含む植物のみをかごに入れることによって;花またはその器官のヒト操作により、自家受粉を可能する;植物の選択的配置により例えば、受粉近傍を超えて植物を意図的に植える;および/または開花を誘発するまたは花粉用の柱頭の感受性を促進する化学薬品の適用によって達成または促進し得る。これらの方法によって包含され、これらの方法を用いて生成された後代植物および種子は他の植物とは異なるであろう。それは、例えば、後代植物および種子は、組換えであって、それ自体がヒト介在によって作成され;グリホサート除草剤耐性であり;本発明の導入遺伝子DNAよりなる少なくとも1つの対立遺伝子を含み;および/または配列番号:1および配列番号:2よりなる群から選択される検出可能な量のポリヌクレオチド配列を含むためである。種子は、個々の後代植物から選択でき、その種子が配列番号:1および配列番号:2を含む限りは、それは本発明の範囲内にあるであろう。本発明を実施するにおいて、2つの異なる遺伝子組換え植物を交配して、2つの独立し分離する異種遺伝子を含む雑種子孫を生成できる。適切な後代の自家受粉は、双方の遺伝子にホモ接合性である植物を生成できる。また、親植物への戻し交配および非遺伝子組換え植物との他家交配は、栄養繁殖であると考えられる。異なる形質および作物に一般的に用いる他の方法の記載は、いくつかの引用文献の1つ、例えば、Fehr,BreedingMethodsforCultivarDevelopment,WilcoxJ.ed.,AmericanSocietyofAgronomy,ウィスコンシン州マディソン所在1987に見出すことができる。また、本明細書に開示された方法に用いる植物および種子は、1以上のさらなる導入遺伝子を含み得る。かかる導入遺伝子は、限定されるものではないが、耐虫性の増加、水使用効率の増加、収率効率の増加、耐乾燥性の増加、種子品質の増加、栄養価の改善、および/または除草剤耐性の増加を含めた望ましい形質を与えるタンパク質をコードするいずれかのヌクレオチド配列またはRNA分子であり得、ここにおいて、望ましい形質は、かかるさらなる導入遺伝子を欠く植物に関して測定される。したがって、本発明の方法は、特に、農業目的または研究目的のために事象MON88302を含む種子および/または植物器官を生成する目的で植物を生育しつつ、圃場における雑草を防除し、植物生育または研究目的のため事象MON88302を含む後代を選択し、次いで、事象MON88302を含む後代植物および種子を生成するのに有用である。本発明の植物、後代、種子、植物細胞、植物器官例えば、花粉、胚珠、鞘、花、根または茎組織、および葉および商品は、DNA組成物、遺伝子発現および/またはタンパク質発現につき評価し得る。かかる評価は、PCR、ノーザンブロット、サザン分析、ウエスタンブロット、免疫沈降法およびELISAのごとき標準的方法、あるいは本明細書において提供された検出方法および/または検出キットを用いることにより行い得る。試料中の事象MON88302に特異的な物質の存在の検出方法が提供される。1つの方法は、事象MON88302を含む細胞、組織または植物に特異的でかつそれらに由来するDNAの存在の検出よりなる。方法は、熱増幅に適切な条件に付される際に事象MON88302DNAからアンプリコン、特に、配列番号:1もしくは配列番号:2のいずれかの少なくとも40の隣接ヌクレオチドまたはその相補体を含むアンプリコンを生成できるプライマー対と接触するテンプレートDNA試料を提供する。テンプレートDNA分子が配列番号:1および配列番号:2に記載された特有でユニークなヌクレオチド配列を組み込む限りは、アンプリコンは、事象MON88302に由来したテンプレートDNA分子から生成される。アンプリコンは、アンプリコンの生成における使用につき選択されたポリメラーゼに依存して、1本鎖もしくは2本鎖のDNAまたはRNAであり得る。方法は、いずれかのかかる熱増幅反応において生成されたアンプリコン分子の検出、およびアンプリコン配列内で配列番号:1もしくは配列番号:2に対応するヌクレオチドまたはその相補体の存在を確認することを提供する。アンプリコンにおける配列番号:1もしくは配列番号:2に対応するヌクレオチドまたはその相補体の検出は、事象MON88302に特異的なDNA、かくして試料中に事象MON88302を含む生物学的物質の存在につき決定的および/または特徴的である。もう一つの方法は、植物または植物組織に由来した物質よりなる試料中で配列番号:3および配列番号:4に対応するDNA分子の存在を検出するために提供される。その方法は、i植物からまたは異なる植物の群からのDNA試料を抽出し、iiDNA試料と、配列番号:1または配列番号:2のいずれかに記載された少なくとも40の隣接ヌクレオチドを示すDNAプローブ分子とを接触させ、iiiプローブおよびDNA試料が、ストリンジェントなハイブリダイゼーション条件下でハイブリダイズすることを可能にし、次いで、ivプローブおよび標的DNA試料間のハイブリダイゼーション事象を検出することよりなる。ハイブリッド組成物の検出は、DNA試料中で場合によっては、配列番号:3または配列番号:4の存在に特徴的である。ハイブリダイゼーションの不存在は、別法として試料中の遺伝子組換え事象の不存在に特徴的である。あるいは、特定の植物が、配列番号:1もしくは配列番号:2に対応する配列のいずれかまたは双方、あるいはその相補体を含むことを決定することは、植物が事象MON88302に対応する少なくとも1つの対立遺伝子を含むことに決定的であるかくして、核酸プローブを用いるポリメラーゼ連鎖反応PCRまたはDNAハイブリダイゼーションのごときいずれかのよく知られた核酸検出方法により、本発明の核酸分子の存在を検出することは可能である。事象に特異的なPCRアッセイは、例えば、TaverniersらJ.Agric.FoodChem.,53:3041-3052,2005により言及され、遺伝子組換えトウモロコシ系Bt11、Bt176およびGA21、および遺伝子組換え事象RT73についての事象に特異的な追跡システムが示されている。この研究において、事象に特異的なプライマーおよびプローブは、各事象についてのゲノム/導入遺伝子結合の配列に基づいて設計された。また、遺伝子組換え植物事象に特異的なDNA検出方法は、米国特許第6,893,826号;第6,825,400号;第6,740,488号;第6,733,974号;第6,689,880号;第6,900,014号および第6,818,807号に記載されている。DNA検出キットが提供される。キットの1タイプは、試料中の遺伝子組換え事象MON88302に由来したDNAの存在を検出するのに特異的なDNAプライマーまたはプローブとして機能する十分な長さの配列番号:3、配列番号:5または配列番号:6の隣接ヌクレオチドの少なくとも1つのDNA分子を含む。このキットで検出されるDNA分子は、配列番号:1に記載の少なくとも40の隣接ヌクレオチドを含む。別法として、このキットは、試料中の遺伝子組換え事象MON88302に由来したDNAの存在を検出するのに特異的なDNAプライマーまたはプローブとして機能する配列番号:4、配列番号:5または配列番号:6の十分な長さの隣接ヌクレオチドの少なくとも1つのDNA分子を含み得る。このキットで検出されるDNA分子は、配列番号:2に記載の少なくとも40の隣接ヌクレオチドを含む。代替キットは、標的DNA試料が前記のごときプライマー対と接触し、次いで、配列番号:1または配列番号:2の少なくとも40の隣接ヌクレオチドまたはその相補体を含むアンプリコンを生成するのに十分な核酸増幅反応を行う方法を使用する。アンプリコンの検出、およびそのアンプリコンの配列内の配列番号:1または配列番号:2の40以上の隣接ヌクレオチドまたはその相補体の存在の決定は、DNA試料中の事象MON88302に特異的なDNAの存在に決定的であるか、別法として、その存在に特徴的である。試料中の事象MON88302DNAに特有でユニークであるDNAの存在または不存在さえを決定、検出または分析するのに有用であるDNAプローブとして用いるのに十分なDNA分子が、提供される。DNA分子は、配列番号:1の少なくとも40の隣接ヌクレオチドもしくはその相補体、または配列番号:2の少なくとも40の隣接ヌクレオチドもしくはその相補体を含む。核酸増幅は、熱増幅方法を含めた当該技術分野において知られた種々の核酸増幅方法のいずれによっても達成できる。事象MON88302からの異種のDNA挿入物の配列、結合配列またはフランキング配列ATCCPTA-10955として寄託された事象MON88302を含む代表的な種子試料を含むは、本明細書に提供された配列に由来するプライマーを用いて、その事象からのかかる配列を増幅し、次いで、アンプリコンまたはクローン化されたDNAの標準的なDNA配列決定によって確認必要ならば修正できる。これらの方法によって生成されたアンプリコンは、複数の技術によって検出し得る。隣接するフランキングゲノムDNA配列および挿入されたDNA配列の双方をオーバーラップさせるDNAオリゴヌクレオチドが設計される場合、かかる1つの方法は、遺伝ビット分析GeneticBitAnalysisNikiforov,etal.NucleicAcidRes.22:4167-4175,1994である。オリゴヌクレオチドは、マイクロウェルプレートのウェル中で固定化される。挿入配列中の1つのプライマーおよび隣接するフランキングゲノム配列中の1つのプライマーを用いて注目する領域の熱増幅後に、1本鎖のアンプリコンを固定化されたオリゴヌクレオチドにハイブリダイズさせ、期待された次の塩基に特異的なDNAポリメラーゼおよび標識されたddNTPsを用いて、一塩基伸長反応用のテンプレートとして機能させることができる。読取りは、蛍光性またはELISAベースであり得る。蛍光性または他のシグナルの検出は、成功した増幅、ハイブリダイゼーションおよび一塩基伸長による挿入物/フランキング配列の存在を示す。もう一つの方法は、WingeInnov.Pharma.Tech.00:18-24,2000によって記載されたピロシーケンスPyrosequencing技術である。この方法において、隣接するゲノムDNAおよび挿入物DNA結合部をオーバーラップさせるオリゴヌクレオチドが設計される。そのオリゴヌクレオチドは、注目する領域からの1本鎖のアンプリコンにハイブリダイズされ挿入された配列における1つのプライマーおよびフランキングゲノム配列の1つのプライマー、DNAポリメラーゼ、ATP、スルフリラーゼ、ルシフェラーゼ、アピラーゼ、アデノシン5’ホスホスルファートおよびルシフェリンの存在下でインキュベートされる。ddNTPは個々に加えられ、その組み込みの結果、光シグナルが測定される。光シグナルは、成功した増幅、ハイブリダイゼーションおよび一または多重の塩基伸長により導入遺伝子挿入物/フランキング配列の存在を示す。ChenらGenomeRes.9:492-498,1999によって記載された蛍光偏光法は、アンプリコンを検出するために用いることができる方法である。この方法を用いて、ゲノムのフランキングおよび挿入されたDNA結合部をオーバーラップさせるオリゴヌクレオチドが設計される。このオリゴヌクレオチドは注目する領域からの1本鎖のアンプリコンにハイブリダイズされ挿入DNAにおける1つのプライマーおよびフランキングゲノムDNA配列における1つのプライマー、DNAポリメラーゼおよび蛍光標識ddNTPの存在下でインキュベートされる。一塩基伸長の結果、ddNTPの組み込みを生じる。組み込みは、蛍光測定器を用いて偏光の変化として測定できる。偏光の変化は、成功した増幅、ハイブリダイゼーションおよび一塩基伸長による導入遺伝子挿入物/フランキング配列の存在を示す。また、TAQMAN登録商標PEAppliedBiosystems,FosterCity,CAを用い、製造者により提供された指示を用いてDNA配列の存在を検出および/または定量し得る。略言すると、ゲノムフランキングおよび挿入物DNA結合部をオーバーラップさせるFRETオリゴヌクレオチドプローブが設計される。FRETプローブおよび増幅プライマー挿入物DNA配列における1つのプライマーおよびフランキングゲノム配列における1つのプライマーが熱安定性ポリメラーゼおよびdNTPの存在下で循環する。FRETプローブのハイブリダイゼーションの結果、蛍光性部分がFRETプローブ上の消光部分から離れて切断および遊離する。蛍光シグナルは、成功した増幅およびハイブリダイゼーションによりフランキング/導入遺伝子挿入物配列の存在を示す。分子ビーコンMolecularBeaconは、TyangiらNatureBiotech.14:303-308,1996に記載された配列検出に用いるために記載されている。略言すると、フランキングゲノムおよび挿入物DNA結合部をオーバーラップさせるFRETオリゴヌクレオチドプローブが設計される。FRETプローブのユニークな構造の結果、それは蛍光性および消光部分を密接な近接に保つ二次構造を含む。FRETプローブおよび増幅プライマー挿入物DNA配列における1つのプライマーおよびフランキングゲノム配列における1つのプライマーが、熱安定性ポリメラーゼおよびdNTPの存在下で循環する。増幅の成功に続いて、標的配列へのFRETプローブのハイブリダイゼーションの結果、蛍光性および消光部分のプローブ二次構造および空間的分離を除去し、蛍光シグナルを生成する。蛍光シグナルは、成功した増幅およびハイブリダイゼーションにより、フランキング/導入遺伝子挿入物配列の存在を示す。マイクロフルイディクス米国特許公開第2006068398号、米国特許第6,544,734号参照;特異的なDNA分子を検出および定量するために用いる光学色素例えば、WO/05017181号;DNA分子の検出用の電子センサーを含む検出のためのナノチューブデバイス例えば、WO/06024023号;または次いで検出され得る特異的DNA分子を結合するナノビーズなど、他に記載されている方法は、DNA試料を分離および増幅する方法およびデバイスを提供する。DNA検出キットは、本明細書に開示された組成物、およびDNA検出の当該技術分野では周知の方法を用いて開発できる。キットは、試料中の事象MON88302の同定に有用であり、適切な事象DNAを含む植物を育種する方法に適用できる。キットは、配列番号:1~6もしくはそのフラグメントまたはその相補体に同様または相補的であるDNAプライマーまたはプローブを含み得る。したがって、本発明のキットおよび検出方法は、特に、事象MON88302の同定、事象MON88302を含む植物品種または雑種の選択、試料中の事象MON88302に由来したDNAの存在の検出および事象MON88302または事象MON88302を含む植物、植物器官または商品の存在および/または不存在について試料をモニタリングするのに有用である。以下の実施例は、本発明のある種の好ましい具体例の例を示すために含める。以下の実施例において開示された技術が、本発明者が本発明の実施に良好な機能を見出したアプローチを表し、かくして、その実施についての好ましい様式の例を含むと考えることができることは、当業者により理解されるであろう。しかしながら、本開示に照らして、当業者ならば、多数の変更を開示された特定の具体例になすことができ、依然として、本発明の精神および範囲から逸脱することなく同様または類似する結果を得ることができることを理解するであろう。実施例実施例1:セイヨウアブラナの形質転換およびMON88302事象の選択本実施例では、遺伝子組換え事象をどのように創製し、事象MON88302をどのように選択したかを説明する。遺伝子組換え事象MON88302は、図1に示した遺伝子組換えDNA配列を配列番号:5で記載でセイヨウアブラナ細胞をアグロバクテリウム媒介形質転換によって生成した。配列番号:5として記載した導入遺伝子インサートは、エンドウマメ遺伝子T-RbcS2,E9由来の3’UTRDNA分子に作動的に結合し、グリホサート耐性EPSPSCP4-synをコードするDNA分子に作動的に結合し、葉緑体輸送ペプチドCTP2、シロイヌナズナEPSPSをコードするDNA分子に作動的に結合し、シロイヌナズナTsf1遺伝子I-At.Tsf1由来のイントロン配列に作動的に結合し、シロイヌナズナTsf1遺伝子L-At.Tsf1由来のリーダー分子に作動的に結合したシロイヌナズナTsf1遺伝子P-At.Tsf1由来のプロモーター分子に作動的に結合したマノハグサモザイクウイルスからの35SエンハンサーE-FMV.35Sに由来するエンハンサー分子からなるキメラプロモーターを含む発現カセットである。まず、アグロバクテリウム媒介形質転換を用いてセイヨウアブラナからの外植片を5つの発現カセットのうちの1つで各々形質転換した。次いで、形質転換された細胞をグリホサートを含む培地で選択して、生存細胞を植物に再生した。23,000超の外植片を生成し、これを用いて全部で224の個々のR0事象を生成し、次のスクリーニングに用いた表1。TAQMAN登録商標PCR分析を用いてMON88302事象の組織試料を選別し、多重コピー事象および/または分子複合事象を除外した。TAQMAN登録商標PCR分析によって決定した1コピーの導入遺伝子の存在およびベクター骨格配列の欠損に基づいて、最初の224の事象から、104の事象を進めた。具体的には、構築物1最初の97事象に関するから37のR1事象を進め、構築物2最初の69事象に関するから32のR1事象を進め、構築物3最初の43事象に関するから11のR1事象を進め、構築物4約30事象に関するから14のR1事象を進め、構築物5約25事象に関するから10のR1事象を進めた。1コピーの導入遺伝子を含む104事象を追加の分子分析および効力試験を含む温室試験GHに進めた。R1温室分子分析には、1コピーの導入遺伝子の存在およびベクター骨格配列の欠損を確認するための最初のサザンブロット解析;3~4葉期、ロゼット期および種子期におけるCP4タンパク質発現レベルの測定;ウエスタンブロット解析によるCP4プロセシングの測定この解析には構築物4および5からの事象を含めなかったを含めた。R1温室効力試験には、分離、クロロシス/ネクロシス、栄養vegetative耐性、初花、生長減退、花粉生存率により測定される雄株の繁殖耐性、および種子数を含めた。104事象についての温室での分子および効力試験の解析から、25事象を第1年圃場試験に進めた。具体的には、圃場試験に進めたのは、構築物1については試験した37のR1事象から16のR2事象、構築物2については試験した32のR1事象からの3のR2事象、構築物3については温室試験に進めた11のR1事象から0のR2事象、構築物4については試験した14のR1事象からの3のR2事象、構築物5については、10のR1事象からの3のR2事象であった。次いで、同じ場所の対になった区画で、農学的評価のための第1年圃場試験でこの25のR2事象を分析した。農学的圃場試験を開始して植物の生育および生長に対する遺伝子挿入の影響を評価した。構築物1からの16のR2事象を5カ所で評価した。構築物2からの3のR2事象、構築物4からの3のR2事象および構築物5からの3のR2事象を4カ所で評価した。各試験には各事象の陽性および陰性等値線isoline対のほか、親の形質転換繁殖質および商業品種を含めた。農学的評価については、草勢、早期群生、初花の日付および草高を観察して植物の生育を評価した。植物の生育および生長に対する遺伝子挿入効果を示すものとして収率データも評価した。事象を全区画としておよび等値線をサブ区画として3つの複製を用いた対になった分割区画デザインを用いた。各事象の陽性および陰性の等値線を対にし、他方では、対照として商業品種および形質転換バックグラウンドを対にして含めた。必要に応じて、手による除草を加えた従来の除草剤プログラムを用いたシーズンを通じて、区画は草の無い状態を維持した。この圃場プロトコールではグリホサート処理を実施しなかった。播種7~10日後に、各区画の出芽/群生数を測定した。土壌から完全に出た子葉を出芽したとみなした。尺度~1優れた草勢、5平均および9草勢不良を用いて、2~3葉期対になった効力試験区画の最初の除草剤施用前の草勢を判定した。全区画が開花し始めた後に初花の日付を記録し、区画あたりの開花の割合として表した。1区画当たりの5植物の草高を土壌表面から中期から後期の花の最も高い総状花序までで測定し、cmで表した。スケール~1優、5平均および9不良を用いて、均一性および立性standabilityを推定した。区画の大半が成熟後、各試験植物を収穫した。区画の一部は直接コンバインで刈り取り、他の区画は、一旦成熟に達したら押して、そのおよそ10日後にswathをコンバインで刈り取った。水分および個々の種子の重量を記録しポンド/A、種子試料を収集して油分およびタンパク質の分析に供した。各場所を分析して、場所間の平均を、統計学的ソフトウェアを使用して分析した。各場所の実験毎の第1種の誤り率5について、ボンフェローニの調整法を用いた削除後ステューデント化残差に基づいた標準的な2パス法を用いてデータの異常値を選別した。分析前に異常値を除外した。制限付き最尤推定法を用いて分割区画デザインについての標準的な分散分析を行った。各事象の各等値線について最小2乗平均を算出し、比較毎の誤り率5によるt検定を用いて、キャノーラ生育特性に対する遺伝子挿入の重要性を決定した。陽性等値線の事象形質を対応する陰性等値線の形質と比較した。事象間には成熟度の差があるため、陽性等値線と貯蔵した陰性等値線との間の比較および商業規格と形質転換バックグラウンドとの比較を除外した。第1年農学的圃場試験の結果から、2つの構築物はいずれも、農学的特徴および収率が遺伝子挿入によって負の影響を受けない複数の事象を生成したことが示唆された。農学的評価に基づき、15の事象が第2年圃場試験に進める候補となった。具体的には、構築物1からの14の事象圃場試験の16のR2事象および構築物2からの1事象圃場試験の3のR2事象が第2年圃場試験に進める候補となった。また、農学的圃場試験と同じ試験場所に位置する第1年効力圃場試験でこの25事象を評価した。効力圃場試験を開始して、種々の施用タイミングおよび施用量でのグリホサートの逐次施用に対する事象の栄養耐性および繁殖耐性を評価した。構築物1からの16のR2事象を5カ所で評価した。構築物2からの3のR2事象、構築物4からの3のR2事象および構築物5からの3のR2事象を4カ所で評価した。各試験には各事象および2種の商業品種の陽性等値線を含めた。除草剤処理を全区画としておよび事象エントリーをサブ区画として、3つの複製を用いた分割区画デザインを用いた。比較のために非散布処理を含めた。作物の出芽から初花にかけて施用したときの1.6ポンドAE/Aの1回の施用または0.8ポンドAE/Aの2回の逐次的施用のいずれかに対する栄養耐性および繁殖耐性について事象を評価した。1回の施用量の2倍、4倍および8倍等量の異なる3つの施用量でRoundupWeatherMAX登録商標を施用した表2。最初の施用は4葉期に行い、その後、2回目の施用を早熟期前に行った。界面活性剤および他の調合成分からの植物損傷の可能性を最小にするために、基準施用量としてRoundupWeatherMAX登録商標を1.6lbAE/A用い、技術的物質界面活性剤を含まないグリホサートを添加して所望の施用量を達成することによって、3.2および6.4ポンドAE/A4倍および8倍を送出する散布液を調製した。全施用は10~20GPAを送出するように調整されたフラットファンノズルを装備したスプレーブームを搭載したトラクターを用いて行った。データ収集は上記のように行った。グリホサート障害は次のように評価した。それぞれのグリホサート施用前に、処理区画および非処理区画の1区画当たり5つの植物について草高および葉数を記録した。グリホサートが事象に障害を与えたかどうかを決定するため、各グリホサート施用の7~10日後にパーセントクロロシスおよびパーセントネクロシスを視覚的に推定した。0無損傷~100植物死滅の尺度を用いて、1回目のグリホサート施用後に栄養損傷を評価し、2回目の施用後に繁殖クロロシス/ネクロシスパーセントを評価した。0~100の尺度を用いて、各施用の14~21日後に生長減退を評価した。1回目の施用後に栄養生長減退を評価し、逐次施用後に繁殖生長減退を決定した。グリホサート濃度と事象の各組合せについて最小2乗平均を算出し、t検定を用いて事象耐性に対するグリホサートの影響の重要性を決定した。グリホサート処理からの事象収率を非処理の対照の収率および商業規格RT73の収率と各除草剤施用量内で比較し、各事象について除草剤施用量を比較した。第1年効力圃場試験の結果から、構築物1はグリホサートに対して優れた栄養耐性および繁殖耐性のある事象を生成したことが示唆される。コンセプト上の2倍の製品施用量にて観察された栄養損傷は極めて小さいもので、商業上重要なものではない。構築物1の事象については傑出した繁殖耐性が認められた。構築物1の全事象の収率は、最大の施用量6.4ポンドAE/Aに続いて6.4ポンドAE/Aで有意な収率低下を示した1事象を除いて、施用量にかかわらずグリホサートによるマイナスの影響を受けなかった。構築物2由来の事象には、進めるためのグリホサートに対する十分な栄養耐性がなかった。試験したどのグリホサート施用量でも許容できないレベルの損傷が観察された。グリホサートは施用量にかかわらず構築物2の全事象の収率を有意に低下させた。構築物4および5由来の事象は構築物1由来の事象ほどは良好に機能せず、したがって、第2年圃場試験には進めなかった。第1年圃場試験に基づき、構築物1からの13の事象を第2年圃場試験に進めた。実施例2:RT73とMON88302との比較圃場試験をデザインし、現在市販されているGenuity商標RoundupReady登録商標キャノーラRT73事象と比較してMON88302を評価した。MON88302とRT73との比較から、MON88302は高いグリホサート施用量に対して優れた作物耐性を与え、ひいては、タンポポ、セイヨウトゲアザミ、ホソノゲムギ、ソバカズラ、シロザおよびホウキギなどの雑草防除が困難な高いグリホサート施用量で雑草防除の改善を可能にすることが明らかとなった。また、MON88302とRT73との比較から、MON88302はグリホサートのより広い施用範囲に対して優れた作物耐性を与え、ひいては、出芽後から初花までのより広いウィンドウへのグリホサート施用が可能になり、RT73を用いた場合よりも、より後の作物の生長期であっても、収率を低下させる雑草の防除が可能になることがわかった。環境条件が早期施用を制限しかつ/または作物収率を低下させるであろうより後の雑草の開芽の防除を改善する場合、MON88302には高いグリホサート施用量に対して増強された耐性があることと、より後の作物期cropstageでのグリホサート施用に対して耐性があることとが相まって、RT73と比較して、より後の生長期でのグリホサート施用が可能になるという利点が得られる。Genuity商標RoundupReady登録商標キャノーラ系事象RT73について現在登録されているグリホサート施用量は、最大でキャノーラ作物の6葉期まで、1回の施用で675gae/haまたは2回の施用で450gae/haである。グリホサートの複数の1回施用量でRT73をMON88302事象と比較した。施用はキャノーラ作物の出芽から初花まで行った。Genuity商標RoundupReady登録商標キャノーラ系RT73事象の代表は市販の開放授粉種34-65とし、事象MON88302をEbony生殖質に形質転換した。8件の試験を確立し、6件で収穫を行った1つの用地は渇水で失敗し、1つの用地は雹で失敗し、変動係数CVが所定のカットオフ値を超えたために、1つの収穫用地からのデータは用いなかった。。シーズンを通して標準的なキャノーラ育成プラクティスを用い、植物の生育を最適化した。従来の発芽前および発芽後除草剤ならびに殺菌剤および殺虫剤を含んだ種子処理剤を用いて防除圧を最も低くした。試験はスプリットブロックデザインとして設定し、Genuity商標RoundupReady登録商標キャノーラRT73事象系またはMON88302系をブロックし、除草剤施用量はブロック内で無作為化した。区画は2m×6mとし、3回複製した。適した収穫期に手持ち式ブームスプレイヤーを用い、100-110l/haの施用量で区画を散布した。カナダ用の処方のRoundupWeatherMAX登録商標540g/Lをグリホサート製品として用いた。主茎に4~6枚の本葉がある状態を4~6葉期と定義し、植物の50が少なくとも1つの花を付けたときを初花とした。除草剤施用7~10日後DATまたは処理後の日数、パーセントクロロシスCHLRを記録した。パーセントクロロシスとは、除草剤処理の結果である植物の葉の黄変量を非処理のチェックと比較して1~100のスケールで視覚的に評価したものである。除草剤施用14~21日後DATにパーセント生長減退GRを記録した。パーセント生長減退とは、限定するものではないが、処理エリアの高さおよび/または葉質の低下から構成される植物の生長減退を表すために用いる視覚的評価である。この評価は植物の地面より上の部分のみに関連するものである。パーセント生長減退を非処理のチェックと比較して1~100のスケールで評価した。播種後から主総状花序の種子の30が茶色/黒色になるまでの日数として成熟度を記録した。全区画を刈り取って列にしswathed、次いで、収穫しやすいように種子水分が十分に低くなるまで乾燥させた。収穫中に重量および種子水分を電子的に記録し、種子水分10時のブッシュル/エーカーに換算した。各場所を個別に分析し、統計ソフトを用いて場所間の平均を分析した。各場所につき実験毎の第1種の誤り5について偽発見率FDR調整を用いた削除後ステューデント化残差に基づき、2パス法を用いてデータの異常値を選別した。分析前に異常値を除外した。制限付き最尤推定法-品種との混合モデルによって分割区画デザインについての標準的な分散分析を行い、除草剤処理を固定効果として処理し、複製および場所を変量効果とした。各品種および各処理について最小2乗平均を算出し、t検定比較毎の誤り率5を用いて、キャノーラの生育特性に対して各除草剤処理濃度における品種と対象との間の重要性を決定した。作物損傷度、成熟度および収率を測定して利益を評価した。事象MON88302を含んだキャノーラと比較した事象RT73を含んだキャノーラのグリホサート耐性に関するデータを表2に示す。要約すると、MON88302のグリホサート耐性は、増大したグリホサート施用量gae/haの耐性およびグリホサート施用に耐えた作物期の範囲の両方の点でRT73のグリホサート耐性よりも優れている。例えば、RT73は4~6葉期への1800gae/haの施用量で4.7のクロロシスを示したが、MON88302は同葉期に同程度の施用量でわずか1.7のクロロシスを示し、2倍の施用量3600gae/haでもクロロシスは増大しなかった。また、MON88302事象は4~6葉期への1800gae/haの施用量でパーセント生長減退を示さなかったが、RT73は5.3生長減退した。4~6葉期および初花作物施用期に3600gae/haのグリホサート施用量では、RT73は10のクロロシスを示したが、MON88302はそれぞれ1.7および4.7に過ぎなかった。4~6葉期および初花作物施用期に3600gae/haのグリホサート施用量では、RT73はそれぞれ20.8および8.1の生長減退を示したが、MON88302はそれぞれ0.3および1.1に過ぎなかった。事象MON88302を含むキャノーラと比較した事象RT73を含むキャノーラ帯に播種後の日数に関するデータを表3に示す。要約すると、4~6葉期施用時および初花施用時の両方で3600gae/haの施用量では、Genuity商標RoundupReady登録商標キャノーラ系RT73事象には成熟度が有意に遅延したが、これは作物損傷によるものと考えられる。MON88302植物では、4~6葉期の施用時に1800gae/haの施用量で成熟が有意に短縮したことを除き、成熟の遅延はみられなかった。事象MON88302を含むキャノーラと比較した事象RT73を含むキャノーラの種子水分量に関するデータを表4に示す。種子水分量は個々の区画を収穫する際に電子的に測定した。各系内の種子水分量は散布したグリホサート施用量と非散布処理との間で比較した。Genuity商標RoundupReady登録商標キャノーラ系種子水分量は、4~6葉期の施用および初花作物期の施用時に1800gae/haおよび3600gae/haの施用量で高かった。また、この2つの処理における種子水分量の増大は、先に記載した作物損傷の結果生じる成熟の遅延を反映している。MON88302植物には種子水分量に対する有意な影響はみられなかった。事象MON88302を含むキャノーラと比較した事象RT73を含むキャノーラの収率に関するデータを表5ならびに図2および3に示す。各事象を含むキャノーラについて、異なるグリホサート施用量と非散布処理との間で収率を比較した。Genuity商標RoundupReady登録商標キャノーラ系では、4~6葉期および初花の施用時の1800および3600gae/haの施用量ならびに初花の施用時の900g/haの施用量では収率の有意な低下がみられた。MON88302植物では、どの施用量またはどのタイミングでも有意な差はみられなかった。Genuity商標RoundupReady登録商標キャノーラ系について現在表示されているグリホサートの施用量は、1回の施用につき675gae/haまたは2回の施用につき450gae/haである。施用は最高6葉期まで行うことが可能である。MON88302の施用量は、作物の初花に最大1800gae/haまで施用し得る。Genuity商標RoundupReady登録商標キャノーラ系では、提案されたMON88302の施用量1800gae/haでは収率は11.4低下し、提案された2倍の施用量では収率は30低下した図2。これらの収率低下は、現在表示されている標識Genuity商標RoundupReady登録商標キャノーラ作物への4~6葉期の施用で観察された。MON88302植物では有意な収率低下はみられなかった。図3はグリホサート施用量および作物期初花の収率を示している。Genuity商標RoundupReady登録商標キャノーラ系では、初花期より後にはどの施用量でも収率は有意に低下した。MON88302植物には収率の有意な低下はみられなかった。実施例3:MON88302のDNA配列の特徴付け植物MON88302のゲノムに挿入されたDNAおよびその挿入部位に隣接するゲノム配列を詳細な分子解析によって特徴付けた。これらの解析には、挿入配列のシークエンシング、挿入数ゲノム内の組み込み部位の数の決定、コピー数1遺伝子座内の導入遺伝子DNAのコピー数の決定、挿入された遺伝子カセットの完全性の評価、フランキング配列の特徴づけを含む。1990年にOchmanらが記載した逆熱増幅PCRProtocols:AguidetoMethodsandApplications,AcademicPress,Inc.を用いて事象MON88302の導入遺伝子DNA挿入に隣接するゲノムDNAを決定した。非遺伝子組換えEbonyおよび実施例1に記載のセイヨウアブラナのアグロバクテリウム媒介形質転換から生じた種々の遺伝子組換え事象から植物ゲノムDNAを単離した。DNA単離に用いた組織は標準的な温室条件下で精製した。約1gの若葉組織を液体窒素と混ぜ合わせ、乳鉢および乳棒を用いて微粉にした。Nucleon商標PhytoPure商標ゲノムDNA抽出キットRPN8511、Amersham社、ニュージャージー州Piscataway所在を用い、製造業者のプロトコールに従ってDNAを抽出した。最終の沈殿工程後、個々の試料からのDNAを0.5mlのTE10mMのTris-HClpH8.0、1mMEDTAに再懸濁した。任意の組織限定するものではないが、種子からDNAを抽出するために、この方法は当業者によって修正されてもよい。導入遺伝子DNAの制限分析に基づいて選択した制限エンドヌクレアーゼによって、各試料からの小分けしたDNAを消化した。制限フラグメントを自己連結させた後、ELONGASE登録商標AmplifcationsystemInvitrogen社、カリフォルニア州カールズバッド所在、カタログ番号10481-018またはExpandLongTemplatePCRSystemRocheAppliedScience社、インディアナ州インディアナポリス所在、カタログ番号のいずれかを用い、導入遺伝子DNAの5’および3’末端から伸びる配列を増幅する導入遺伝子DNA配列からデザインしたプライマーを用いて熱増幅を行った。この反応から生成されたアンプリコンをアガロースゲル電気泳動によって分離し、QIAGENゲル精製キットQiagen社、カリフォルニア州バレンシア所在を用いて精製した。ゲル精製したアンプリコンを製造業者のプロトコールに従ってpCR登録商標-XL-TOPO登録商標ベクターInvitrogen社、カリフォルニア州カールズバッド所在に複製した。標準的なDNAシークエンシングプロトコールを用いて、事象MON88302フランキングゲノム配列を含む得られたプラスミドを配列決定した。ゲノムに挿入された遺伝子組換えDNAの5’末端に隣接するか、またはフランキングするゲノムDNAを配列番号:3で示した図1[C]を参照。ゲノムに挿入された遺伝子組換えDNAの3’末端に隣接するゲノムDNAを配列番号:42で示した図1の[D]を参照されたい。ゲノムDNAに完全に組み込まれた発現カセットDNAのセグメントを配列番号:5で示す図1[E]を参照されたい。単離DNA分子の配列を導入遺伝子DNAの配列と比較し、フランキング配列および同時に単離された導入遺伝子DNAフラグメントを同定した。推定フランキング配列のデータおよび既知の導入遺伝子DNAの配列に基づいて指定されたプライマーを用いた熱増幅によって、発現カセットが存在していることを確認した。事象MON88302のフランキング配列から設計されたプライマーを用いて、導入遺伝子DNAが形質転換された系列に組み込まれたのと同じ領域に相当する野生型配列を単離した。熱増幅反応は、ELONGASE登録商標AmplificationsystemInvitrogen社、カリフォルニア州カールズバッド所在、カタログ番号10481-018を用いて行った。複数のヌクレオチドデータベースおよびタンパク質データベースについて事象MON88302のフランキング配列およびEbony野生型配列を解析した。この情報を用いて導入遺伝子と植物ゲノムとの関係を検討し、挿入部位の完全性を評価した。このフランキング配列および野生型配列を用いて、かかる事象を同定するのに用いるTAQMANエンドポイントアッセイ用のプライマーを設計した。実施例4:事象特異的エンドポイントTAQMAN登録商標アッセイ本実施例では試料中の事象MON88302を同定するために開発された事象特異的エンドポイントTAQMAN登録商標熱増幅法を記載する。事象MON88302に特異的なエンドポイントTAQMAN登録商標法に有用な条件の例は次の通りである。ステップ1:18メガオーム水を最終量10μlに調整。ステップ2:5.0μlの2XUniversalMasterMixdNTPs、酵素、緩衝液を1Xの最終濃度に調整。ステップ3:0.5μlのプライマー1およびプライマー2ミックス各プライマーを濃度20μMまで18メガオーム水に再懸濁を最終濃度1.0μMに調整例えば、微小遠心管を用いた場合、最終濃度20μMで500μlを得るために次のものを添加する必要がある:最終濃度100μMのプライマーSQ20901配列番号:9100μl;最終濃度100μMのプライマーSQ23770配列番号:10;18メガオーム水300μl。ステップ4:0.2μlの事象6-FAM商標MGBプローブPB10164配列番号:11を0.2μMの最終濃度に調整。ステップ5:0.5μl内部対照プライマーSQ2563配列番号:17および内部対照プライマーSQ2564配列番号:18ミックスを各プライマーにつき1.0μMの最終濃度に調整。ステップ6:0.2μMの内部対照VIC商標プローブPB0751配列番号:19を最終濃度0.2μMに調整。ステップ7:各試料につき3.0μlの抽出DNAテンプレート、それぞれ、1.分析用葉試料、2.陰性対照非遺伝子組換えDNA、3.陰性水対照テンプレート無し、4.陽性対照MON88302DNAを含む。ステップ8:サーモサイクラー条件は次の通りとする:50°Cで2分間を1サイクル;95°Cで10分間を1サイクル;95°Cで15秒間、次いで64°Cで1分間を10サイクル1サイクルにつき-1°C;95°Cで15秒間、次いで54°Cで1分間を40サイクル;最終サイクルは10°Cとする。この方法に有用なDNA分子は、例えば、プライマーSQ20901配列番号:9およびSQ23770配列番号:10ならびに6FAM商標標識オリゴヌクレオチドプローブPB10164配列番号:11である。他のプローブおよびプライマーは、本明細書に記載した導入遺伝子インサートの配列および/またはフランキング配列に基づいて設計し得る。PB10164配列番号:11と共にこれらの反応方法に用いる場合、SQ20901配列番号:9およびSQ23770配列番号:10は、事象MON88302DNAに特徴的であるアンプリコンを生成する。また、エンドポイントTAQMAN増幅法は、FatAセイヨウアブラナ内の1コピーの内在性遺伝子であるを増幅することによってテンプレートDNAの完全性を確認する。この方法に有用なDNA分子は、例えば、SQ2563配列番号:17プライマーおよびSQ2564配列番号:18プライマーおよびVIC商標標識オリゴヌクレオチドプローブPB0751配列番号:19である。この解析のための対照には、事象MON88302DNAを含むセイヨウアブラナからの陽性対照、非遺伝子組換えセイヨウアブラナからの陰性対照およびテンプレートDNAを含まない陰性対照が含まれる。また、エンドポイントTAQMAN登録商標熱増幅法を用い事象MON88302についての接合状態アッセイを開発した。接合状態アッセイは、ある事象を含んだ植物が、その事象のDNAすなわち、染色体対の各染色体上の同じ場所に外生DNAを含むにホモ接合性であるかどうか、またはある事象DNAすなわち、染色体対の一方の染色体のみに外生DNAを含むにヘテロ接合性かどうか、あるいはその事象DNAすなわち、野生型にヌルかどうかを決定するのに有用である。本実施例は、試料中の事象MON88302の接合状態を決定するために開発された事象特異的エンドポイントTAQMAN登録商標熱増幅法を説明する。このアッセイでは、3種のプライマーアッセイを用いたプライマーSQ21948配列番号:12は挿入された外生DNAとハイブリダイズし、その外生DNAから特異的に伸長し、プライマーSQ22176配列番号:13は挿入された外生DNAの5’側に隣接するDNAとハイブリダイズし、そのDNAから特異的に伸長し、プライマーSQ24635配列番号:14は挿入された外生DNAの3’側に隣接するDNAとハイブリダイズし、そのDNAから特異的に伸長する。この3つのプライマーは事象MON88302に特徴的である。本実施例では、プライマーSQ22176配列番号:13およびプライマーSQ21948配列番号:12ならびに6FAM商標標識オリゴヌクレオチドプローブPB4213配列番号:15は、挿入された外生DNAのコピーが存在する場合に特徴的である。本実施例では、SQ22176配列番号:13およびプライマーSQ24635配列番号:14ならびにVIC商標標識オリゴヌクレオチドプローブPB10787配列番号:16は、挿入された外生DNAのコピーがゲノムDNAすなわち、野生型に存在しない場合に特徴的である。この3つのプライマーおよび2つのプローブを事象MON88302にホモ接合性の植物から抽出したDNAとPCR反応により共に混合すると、事象MON88302にホモ接合性である植物であることを示し、特徴的である6FAM商標標識オリゴヌクレオチドプローブPB4213配列番号:15からのみ蛍光シグナルが存在する。この3つのプライマーおよび2つのプローブを事象MON88302にヘテロ接合性の植物から抽出したDNAとPCR反応により共に混合すると、事象MON88302にヘテロ接合性である植物であることを示し、特徴的である6FAM商標標識オリゴヌクレオチドプローブPB4213配列番号:15およびVIC商標標識オリゴヌクレオチドプローブPB10787配列番号:16の両方から蛍光シグナルが存在する。この3つのプライマーおよび2つのプローブを事象MON88302にヌルであるすなわち、野生型植物から抽出したDNAとPCR反応により共に混合すると、事象MON88302にヌルである植物すなわち、野生型を示し、特徴的であるVIC商標標識オリゴヌクレオチドプローブPB10787配列番号:16からのみ蛍光シグナルが存在する。この方法に有用な条件の例は次の通りである。ステップ1:18メガオーム水を最終量10μlに調整。ステップ2:5.0μlの2XUniversalMasterMixdNTPs、酵素、緩衝液を1Xの最終濃度に調整。ステップ3:0.5μlの接合状態プライマーSQ21948、SQ22176、SQ24635各プライマーを濃度20μMまで18メガオーム水に再懸濁を最終濃度1.0μMに調整例えば、微小遠心管を用いた場合、最終濃度20μMで500μlを得るために次のものを添加する必要がある。濃度100μMで100μlのプライマー1;濃度100μMで100μlのプライマー2;300μlの18メガオーム水。ステップ4:0.2μlの接合状態6-FAM商標MGBプローブPB4213配列番号:15最終濃度10μlまで18メガオーム水に再懸濁を最終濃度0.2μMに調整。ステップ5:0.5μlの内部対照プライマーSQ22176配列番号:13および内部対照プライマーSQ24635配列番号:14のミックス各プライマーにつき濃度20μMに18メガオーム水に再懸濁を各プライマーにつき最終濃度1.0μMに調整。ステップ6:0.2μMの内部対照VIC商標プローブPB10787配列番号:16最終濃度10μMまで18メガオーム水に再懸濁を最終濃度0.2μMに調整。ステップ7:各試料につき3.0μlの抽出DNAテンプレート、それぞれ、1.分析用葉試料、2.陰性対照非遺伝子組換えDNA、3.陰性水対照テンプレート無し、4.陽性対照MON88302DNAを含む。ステップ8:サーモサイクラー条件は次の通りとする:50°Cで2分間を1サイクル;95°Cで10分間を1サイクル;95°Cで15秒間、次いで64°Cで1分間を10サイクル1サイクルにつき-1°C;95°Cで15秒間、次いで54°Cで1分間を30サイクル;最終サイクルは10°Cとする。System9700またはStratageneRobocycler,MJEngineDNAEnginePTC-225サーモサイクラーを使用し得る。当業者には生物学的試料中の事象MON88302DNAの同定用のアンプリコンを生成するのに有用であろう他の方法および装置が知られている。EppendorfMastercyclerGradientまたはMJEngineを用いて熱増幅を行う場合、そのサーモサイクラーは計算モードで試行すべきである。Perkin-Elmer9700を用いて熱増幅を行う場合、そのサーモサイクラーを最大のランプ速度で設定すべきである。実施例5:MON88302生育活動中の事象MON88302の同定本実施例は、事象MON88302を含む植物を用いて、いずれかの生育活動の後代内の事象MON88302をどのように同定し得るかを記載する。DNA事象プライマー対を用いて、事象MON88302に特徴的なアンプリコンを生成する。事象MON88302に特徴的なアンプリコンは、少なくとも1つの結合配列を含み、それは、本明細書において、配列番号:1または配列番号:2として供される図1に示した各々[A]および[B]。配列番号:1図1の[A]は、導入遺伝子挿入物の5’末端とのフランキング配列の結合部に対応するヌクレオチド配列である配列番号:3の762~821位[C]、図1参照。配列番号:2[B]、図1参照は、導入遺伝子挿入物の3’末端とのフランキング配列の結合部に対応するヌクレオチド配列である配列番号:4の313~372位[D]、図1参照。事象MON88302に特徴的なアンプリコンを生成する事象プライマー対は、フランキング配列配列番号:3および4および挿入された遺伝子組換えDNA配列配列番号:5を用いて設計したプライマー対を含む。配列番号:1の少なくとも40ヌクレオチドを見出す特徴的なアンプリコンを獲得するために、配列番号:3の第1~791塩基に基づいた順方向プライマー分子および挿入された発現カセットDNA配列、配列番号:5の第1~4427位に基づいた逆方向プライマー分子を設計し、ここに、それらのプライマー分子は、配列番号:3および配列番号:5に特異的にハイブリダイズするのに十分な長さの隣接ヌクレオチドのものである。配列番号:2の少なくとも40ヌクレオチドを見出す特徴的なアンプリコンを獲得するために、挿入された発現カセット、配列番号:5の第1~4427位に基づいた順方向プライマー分子、および3’フランキング配列、配列番号:4の第343~1250塩基に基づいた逆方向プライマー分子を設計し、ここに、それらのプライマー分子は、配列番号:4および配列番号:5に特異的にハイブリダイズするのに十分な長さの隣接ヌクレオチドのものである。実際的な目的のために、限られたサイズ範囲、例えば、100~1000の塩基間のアンプリコンを生成するプライマーを設計するであろう。より小さなより短いポリヌクレオチド長のサイズのアンプリコンは、一般的にPCR反応においてより確実に生成され、短いサイクル時間を可能とし、容易にアガロースゲル上で分離および視覚化されるか、またはエンドポントTAQMAN様アッセイにおける使用に適する。より小さなアンプリコンはアンプリコン検出の当該技術分野において知られた方法によって生成および検出できる。加えて、プライマー対を用いて生成したアンプリコンはベクターにクローン化でき、増殖、単離および配列決定できるか、または当該技術分野においてよく確立された方法を用いて直接的に配列決定できる。事象MON88302またはその後代に特徴的なアンプリコンを生成するDNA増幅方法に有用である配列番号:3もしくは配列番号:5の組合せまたは配列番号:4および配列番号:5の組合せに由来したいずれのプライマー対も、本発明の態様である。事象MON88302を含む植物またはその後代に特徴的なアンプリコンを生成するDNA増幅方法に有用である配列番号:3の少なくとも11の隣接ヌクレオチドまたはその相補体を含む、いずれの単一の単離されたDNAポリヌクレオチドプライマー分子も、本発明の態様である。事象MON88302を含む植物またはその後代に特徴的なアンプリコンを生成するDNA増幅方法に有用である配列番号:4の少なくとも11の隣接ヌクレオチドまたはその相補体を含む、いずれの単一の単離されたDNAポリヌクレオチドプライマー分子も、本発明の態様である。事象MON88302を含む植物またはその後代に特徴的なアンプリコンを生成するDNA増幅方法に有用である配列番号:5の少なくとも11の隣接ヌクレオチドまたはその相補体を含む、いずれの単一の単離されたDNAポリヌクレオチドプライマー分子も、本発明の態様である。この分析のための増幅条件の一例を実施例4に記載する。しかしながら、これらの方法、あるいは配列番号:3もしくは配列番号:4に相同的または相補的であるDNAプライマーまたは事象MON88302に特徴的なアンプリコンを生成する事象MON88302の導入遺伝子挿入物配列番号:5のDNA配列の使用の変更は、本開示の範囲内にある。特徴的なアンプリコンは、少なくとも1つの導入遺伝子/ゲノム結合部DNA配列番号:1または配列番号:2または配列番号:7または配列番号:8、またはその実質的な部分に相同的または相補的なDNA分子を含む。試料中の事象MON88302の分析は、事象MON88302からの陽性対照、事象MON88302ではない相当する植物からの陰性対照例えば、限定されるものではないが、セイヨウアブラナおよび/またはゲノムDNAを含まない陰性対照を含み得る。内因性DNA分子を増幅するプライマー対は、DNA増幅条件についての内部標準として機能し得る。配列番号:3,配列番号:4または配列番号:5に記載された配列から選択された配列のいずれの断片も、実施例4に示した方法によりアンプリコンの生成のためのDNA増幅プライマーとして用いることもでき、かかるアンプリコンは、事象MON88302をかかる特徴的な増幅反応用のテンプレートとして用いる場合に、事象MON88302に特徴的であり得る。実施例4の方法に対する変更を含むこれらのDNAプライマー配列の使用は、本発明の範囲内にある。事象MON88302に特徴的である配列番号:3,配列番号:4または配列番号:5から由来した少なくとも1つのDNAプライマー配列により生成されたアンプリコンは、本発明の態様である。かくして、配列番号:3、配列番号:4または配列番号:5に由来した十分な長さの隣接ヌクレオチドの少なくとも1つのDNAプライマーを含み、DNA増幅方法に用いる場合に事象MON88302を含む植物またはその後代に特徴的なアンプリコンを生成するであろうDNA検出キットを設計でき、これは本発明の態様である。DNA増幅方法で試験した場合に事象MON88302に特徴的なアンプリコンを植物器官または種子あるいは商品は本発明の態様である。事象MON88302アンプリコンについてのアッセイは、本明細書に記載の事象MON88302に特徴的なアンプリコンを生成するのに使用することができる任意のサーモサイクラーまたは核酸増幅システムを用いることによって行うことができる。上記に開示し、特許請求の範囲に引用した事象MON88302種子の代表的試料の寄託は、ブダペスト条約に基づいて郵便番号20110、バージニア州マナッサス、10801UniversityBoulevard所在の米国培養細胞系統保存機関ATCCでなされた。この寄託のATCC受入番号はPTA‐10955である。寄託は、30年間、または最後の請求から5年後、あるいは特許有効期間のいずれかの長い方で、貯蔵施設に保管され、その期間中に必要に応じて交換されるであろう。本発明の原理を例示および記載してきたが、本発明はかかる原理から逸脱することなく構成および細部を変更できることは当業者には明らかであろう。本発明者らは、添付の特許請求の範囲の精神および範囲内にあるすべての変更を特許請求する。"