"少なくとも1種の標的病原菌と競合する微生物とを含む試料を、酸素不足の条件下で増殖培地中で培養するステップを含むジェイムソン効果を防止するための培養方法。前記競合する微生物が、前記少なくとも1種の標的病原菌よりも増殖速度が速いおよび/またはより高い開始濃度を有する請求項1に記載の方法。前記増殖培地が非選択増殖培地を含む請求項1に記載の方法。前記競合する微生物が、前記標的病原菌よりも少なくとも100倍高い開始濃度を有する請求項1に記載の方法。前記標的病原菌が、リステリア属、サルモネラ属、大腸菌属、およびカンピロバクター属のうちの1種以上を含む請求項1に記載の方法。前記少なくとも1種の標的病原菌を検出および/または定量化するための検出アッセイを行うステップをさらに含む請求項1に記載の方法。前記増殖培地の溶存酸素濃度が6.6mg/L未満である請求項1に記載の方法。前記増殖培地の溶存酸素濃度が3.3mg/L未満である請求項1に記載の方法。前記増殖培地の溶存酸素濃度が1.3mg/L未満である請求項1に記載の方法。前記増殖培地が、ブレインハートインフージョンブロス、ニュートリエントブロスまたはトリプチックソイブロスである、請求項1に記載の方法。前記標的病原菌を検出および/または定量化するために検出アッセイが使用され、前記検出アッセイが、寒天プレート、発色性寒天プレート、酵素結合免疫吸着アッセイELISA、免疫クロマトグラフィー、ポリメラーゼ連鎖反応PCR、逆転写PCRRT-PCR、リアルタイムPCR、リアルタイムRT-PCR、核酸配列ベース増幅NASBA、ループ媒介等温増幅LAMP、等温核酸増幅、核酸プローブ、バイオセンサー、マルチプレックスPCR、マルチプレックスリアルタイムPCR、DNAマイクロアレイ、タンパク質マイクロアレイ、またはルミネックスシステムを含む請求項1に記載の方法。前記試料が少なくとも2種の標的病原菌を有する請求項1に記載の方法。前記非選択培地が抗生物質を含まない請求項3に記載の方法。前記酸素不足の条件が、酸素不足の雰囲気下で前記試料を培養するステップ、前記増殖培地に酸素枯渇剤を添加するステップ、前記試料を密封容器内で培養するステップ、静置培養するステップ、および/または前記増殖培地の表面に油の層を適用するステップによって確立される請求項1に記載の方法。前記酸素枯渇剤が、オキシラーゼ酵素、アルコールオキシダーゼ、グルコースオキシダーゼ、システイン、および/またはクエン酸チタンIIIである請求項14に記載の方法。前記培養培地が、液体培地、半流動培地、または固体培地である請求項1に記載の方法。前記試料が、前記標的病原菌および前記競合する微生物を大容量の微粒子試料から回収するために使用される高多孔質濾過材料上に配置される請求項1に記載の方法。前記少なくとも1種の標的病原菌がリステリア属の細菌である請求項1に記載の方法。前記増殖培地の溶存酸素濃度が、大気中の酸素濃度の50未満である請求項1に記載の方法。前記増殖培地の溶存酸素濃度が、大気中の酸素濃度の25未満である請求項19に記載の方法。前記増殖培地の溶存酸素濃度が、大気中の酸素濃度の10未満である請求項20に記載の方法。少なくとも1種の標的病原菌と、前記少なくとも1種の標的病原菌よりも高い開始濃度を有するおよび/または増殖速度がより速い競合する微生物とを含む試料を、酸素不足の条件下で増殖培地中で培養するステップと、前記少なくとも1種の標的病原菌の存在および/または濃度を検出する検出アッセイを行うステップとを含むジェイムソン効果を防止するための培養方法。前記競合する微生物が、前記少なくとも1種の標的病原菌よりも増殖速度が高いおよび/またはより高い開始濃度を有する請求項22に記載の方法。前記増殖培地が非選択増殖培地を含む請求項22に記載の方法。前記競合する微生物が、前記標的病原菌よりも少なくとも100倍高い開始濃度を有する請求項22に記載の方法。前記標的病原菌が、リステリア属、サルモネラ属、大腸菌属、およびカンピロバクター属のうちの1種以上を含む請求項22に記載の方法。前記増殖培地の溶存酸素濃度が、6.6mg/L未満である請求項22に記載の方法。前記増殖培地の溶存酸素濃度が、3.3mg/L未満である請求項22に記載の方法。前記増殖培地の溶存酸素濃度が、1.3mg/L未満である請求項22に記載の方法。前記増殖培地が、ブレインハートインフージョンブロス、ニュートリエントブロス、またはトリプチックソイブロスである請求項22に記載の方法。前記検出アッセイが、寒天プレート、発色性寒天プレート、酵素結合免疫吸着アッセイELISA、免疫クロマトグラフィー、ポリメラーゼ連鎖反応PCR、逆転写PCRRT-PCR、リアルタイムPCR、リアルタイムRT-PCR、核酸配列ベース増幅NASBA、ループ媒介等温増幅LAMP、等温核酸増幅、核酸プローブ、バイオセンサー、マルチプレックスPCR、マルチプレックスリアルタイムPCR、DNAマイクロアレイ、タンパク質マイクロアレイ、またはルミネックスシステムを含む請求項22に記載の方法。前記試料が少なくとも2種の標的病原菌を有する請求項22に記載の方法。前記増殖培地が非選択培地である請求項22に記載の方法。前記非選択培地が抗生物質を含まない請求項33に記載の方法。前記酸素不足の条件が、酸素不足の雰囲気下で前記試料を培養するステップ、前記増殖培地に酸素枯渇剤を添加するステップ、前記試料を密封容器内で培養するステップ、静置培養するステップ、および/または前記増殖培地の表面に油の層を適用するステップによって確立される請求項22に記載の方法。前記酸素枯渇剤が、オキシラーゼ酵素、アルコールオキシダーゼ、グルコースオキシダーゼ、システイン、および/またはクエン酸チタンIIIである請求項35に記載の方法。前記培養培地が、液体培地、半流動体培地、または固体培地である請求項22に記載の方法。前記試料が、前記標的病原菌および前記競合する微生物を大容量の微粒子試料から回収するために使用される高多孔質濾過材料上に配置される請求項22に記載の方法。前記少なくとも1種の標的病原菌がリステリア属の細菌である請求項22に記載の方法。前記増殖培地の溶存酸素濃度が、大気中の酸素濃度の50未満である請求項22に記載の方法。前記増殖培地の溶存酸素濃度が、大気中の酸素濃度の25未満である請求項40に記載の方法。前記増殖培地の溶存酸素濃度が、大気中の酸素濃度の10未満である請求項41に記載の方法。本発明は、上記の欠陥の問題のうちの1つ以上に随意に対処する。したがって、本発明は、少なくとも1種の標的病原菌と競合する微生物とを含む試料を、酸素不足の条件下で増殖培地中で培養するステップを含むジェイムソン効果を防止するための培養方法などの方法を含んでもよい。さらなる態様によれば、本発明は、少なくとも1種の標的病原菌と、前記少なくとも1種の標的病原菌よりも高い開始濃度を有するおよび/または増殖速度がより速い競合する微生物とを含む試料を、酸素不足の条件下で非選択増殖培地中で培養するステップと、前記少なくとも1種の標的病原菌の存在および/または濃度を検出する検出アッセイを行うステップとを含むジェイムソン効果を防止するための培養方法を含む。さらなる任意の態様によれば、本発明は、以下の追加の態様および/またはステップ、すなわち、前記競合する微生物が、前記少なくとも1種の標的病原菌よりも増殖速度が速くおよび/または高い開始濃度を有する上記方法複数可、前記増殖培地が非選択増殖培地を含む上記方法複数可、前記競合する微生物が、前記標的病原菌よりも少なくとも100倍高い開始濃度を有する上記方法複数可、前記標的病原菌が、リステリア属、サルモネラ属、大腸菌属、およびカンピロバクター属のうちの1種以上を含む上記方法複数可、前記少なくとも1種の標的病原菌を検出するおよび/または定量化するための検出アッセイを行うステップをさらに含む上記方法複数可、前記増殖培地の溶存酸素濃度が、大気中の酸素濃度の50未満、場合により大気中の酸素濃度の25未満、大気中の酸素濃度の10未満、または大気中の酸素濃度の5未満である上記方法複数可、前記増殖培地の溶存酸素濃度が、大気中の酸素濃度の50未満、たとえば、6.6mg/L未満である上記方法複数可、前記増殖培地の溶存酸素濃度が、大気中の酸素濃度の25未満、たとえば、3.3mg/L未満である上記方法複数可、前記増殖培地の溶存酸素濃度が、大気中の酸素濃度の10未満、たとえば、1.3mg/L未満である上記方法複数可、前記増殖培地が、ブレインハートインフージョンブロス、ニュートリエントブロス、またはトリプチックソイブロスである上記方法複数可、前記標的病原菌を検出および/または定量化するために検出アッセイが使用され、前記検出アッセイが、寒天プレート、発色性寒天プレート、酵素結合免疫吸着アッセイELISA、免疫クロマトグラフィー、ポリメラーゼ連鎖反応PCR、逆転写PCRRT-PCR、リアルタイムPCR、リアルタイムRT-PCR、核酸配列ベース増幅NASBA、ループ媒介等温増幅LAMP、等温核酸増幅、核酸プローブ、バイオセンサー、マルチプレックスPCR、マルチプレックスリアルタイムPCR、DNAマイクロアレイ、タンパク質マイクロアレイ、またはルミネックスシステムを含む上記方法複数可、前記試料が少なくとも2種の標的病原菌を有する上記方法複数可、前記増殖培地が非選択培地である上記方法複数可、前記非選択培地が抗生物質を含まない上記方法複数可、前記酸素不足の条件が、前記試料を酸素が20未満の雰囲気下で培養するステップ、前記増殖培地に酸素枯渇剤を添加するステップ、前記試料を密封容器内で培養するステップ、静置培養するステップ、および/または前記増殖培地の表面に油の層を適用するステップによって確立される上記方法複数可、前記酸素枯渇剤が、オキシラーゼOxyrase酵素、アルコールオキシダーゼ、グルコースオキシダーゼ、システイン、および/またはクエン酸チタンIIIである上記方法複数可、前記培養培地が、液体培地、半流動体培地、または固体培地である上記方法複数可、前記試料が、前記標的病原菌および前記競合する微生物を大容量の微粒子試料から回収するために使用される高多孔質濾過材料上に配置される上記方法複数可、ならびに/または前記少なくとも1種の標的病原菌がリステリア属の細菌である上記方法複数可の1つ以上、または1つ以上の任意の組合せをさらに含み得る。本発明は、上で考察された先行技術の問題点および欠陥のうちの1つ以上に対処してもよい。しかし、本発明は、他の問題点および欠陥に対処するのに有用であることが判明し得ること、または多くの技術領域において利益および利点を提供し得ることが企図されている。したがって、請求項に記載される発明は、必ずしも本明細書において考察される特定の問題点または欠陥のいずれかに対処することに限定されると解釈されるべきではない。記載されている実施形態は本発明の好ましい実施形態を表すが、本発明の趣旨を逸脱することなく当業者は変更を思い付くだろうことが理解されるべきである。したがって、本発明の範囲は、添付されている特許請求の範囲によってのみ決定されるべきである。本発明の特定の態様に従えば、酸素不足の培養は、ジェイムソン効果、すなわち、培養物中の高い全微生物濃度はその中のあらゆる微生物の増殖を抑制するという現象を効果的に予防することができる。特に、酸素不足の培養は、抗生物質などのいかなる選択作用物質も使用せずに、競合する微生物が高い開始濃度を有する試料においてさえL.モノサイトゲネスの連続増殖を促進することができる。これとは対照的に、競合する微生物が高い開始濃度を有する試料におけるL.モノサイトゲネスの増殖は、ジェイムソン効果のために好気的培養では抑制され、L.モノサイトゲネスの培養後の濃度は、従来の検出アッセイの検出閾値に到達することができない。酸素不足条件および好気的条件は単独培養すなわち、L.モノサイトゲネスのみで開始する培養でのL.モノサイトゲネスの増殖速度にいかなる差も生じず、このことはいくつかの出版物により裏付けられているため、この結果は思いがけないものであった。さらに、本発明に従えば、酸素不足条件および好気的条件は、単独培養で損傷を受けたL.モノサイトゲネスの蘇生にそれほど影響を与えないことが観察された。本発明の原則に従って実施される培養方法は、1種以上の標的病原菌と、該標的病原菌よりも高い開始濃度を有するおよび/または増殖速度が速い競合する微生物とを含有する試料を、酸素不足の条件下で非選択増殖培地中で培養するステップと、場合により、該標的病原菌を検出するステップとを含む。増殖培地は、一般に、病原菌増殖のための炭素源、窒素源、アミノ酸、および様々な塩の1つ以上を含む。増殖培地は、L.モノサイトゲネス、サルモネラ菌種、および大腸菌O157:H7などの複数の病原菌の増殖ならびに熱、冷却、酸、アルカリ、冷蔵、凍結、圧力、および/または真空などの状態により損傷を受けた病原菌の急速蘇生を支持する非選択増殖培地であり得る。L.モノサイトゲネス、サルモネラ菌種、および大腸菌O157:H7のための好ましい増殖培地には、ブレインハートインフージョンブロス、ニュートリエントブロス、およびトリプチックソイブロスが含まれる。または、増殖培地は、競合する微生物に対する抗生物質などの1つ以上の選択作用物質を含む選択増殖培地であり得る。しかし、選択作用物質の濃度が高い培地は、損傷を受けた病原菌の蘇生を妨げ、培養物中のすべての病原菌の増殖速度を下げることがある。増殖培地は、培養中の増殖培地のpHを維持するために、好ましくはpH5~9の1~500mMのリン酸緩衝液、さらに好ましくはpH5.5~8.5の10~200mMのリン酸緩衝液を用いて緩衝することができる。酸素不足の培養は、溶存酸素が制限されている増殖培地において本発明に従って行うことができる。増殖培地は、半流動体培地、固体培地、または好ましくは液体培地でもよい。酸素不足の条件は、培養中の増殖培地における溶存酸素濃度が大気中の酸素濃度未満であることを意味する。より具体的には、増殖培地中の溶存酸素濃度は、酸素不足の条件下にある。よって、酸素濃度は大気中の酸素濃度の50未満たとえば、6.6mg/Lもしくはそれ未満、あるいは25未満たとえば、3.3mg/Lもしくはそれ未満、または10未満たとえば、1.3mg/Lもしくはそれ未満でもよい。溶存酸素濃度は、OaktonDO300シリーズメータなどの市販の溶存酸素センサーにより測定することができる。増殖培地の酸素濃度は、オキシラーゼ酵素Oxyrase,Inc.、OH、アルコールオキシダーゼ、グルコースオキシダーゼ、システインおよびクエン酸チタンIIIなどの酸素枯渇剤を増殖培地に添加することにより制御することができる。たとえば、0g/L、0.25g/L、0.5g/L、1.0g/L、2.0g/L、または4.0g/LのL-システインを添加した5mLのBHI培地の溶存酸素濃度は、それぞれ8.1mg/L、2.4mg/L、0.92mg/L、0.01mg/L未満、0.01mg/L未満、および0.01mg/L未満であった。別の例では、ブロス用のオキシラーゼまたは寒天用のオキシラーゼOxyrase,Inc.、OHを20μL/mLまたは100μL/mL添加した5mLのBHIブロスの溶存酸素濃度は、酸素センサーの検出範囲よりも低い、または0.01mg/L未満であった。培養中の増殖培地の酸素濃度は、試料を密封容器内で培養すること、試料を酸素不足の雰囲気たとえば、50未満の酸素中で培養すること、酸素溶解を抑制する静置培養、および/または酸素溶解を抑制する油の層たとえば、鉱油を培養物と雰囲気との界面に適用することによって酸素の換気を制限するなどの方法により制御することも可能である。品質管理のために、培養中の増殖培地の溶存酸素濃度を直接的にまたは間接的にモニターすることも有用であり得る。容器内の培養物上の気体酸素濃度を測定することにより溶存酸素濃度の間接的測定を行うことができる。RedEye酸素センサーパッチOceanOptics、FLなどの使い捨ての酸素センサーは、酸素不足の培養物の酸素濃度を非侵襲的な形でモニターするのに有用であり得る。本明細書に記載される方法には著しい利点がある。この方法は、標的病原菌よりも高い開始濃度を有するおよび/または増殖速度が速い競合する微生物たとえば、大腸菌、サルモネラ菌、または食物試料中に頻繁に存在する他の微生物の存在下で、試料中の複数種の標的病原菌たとえば、リステリア属たとえば、L.モノサイトゲネス、サルモネラ属、大腸菌属、および/またはカンピロバクター属における種の同時培養を可能にする。従来の好気的培養物中のそのような競合する微生物は、ジェイムソン効果のために標的病原菌の増殖を抑制する。これとは対照的に、本発明の方法における酸素不足の条件は、競合する微生物が存在するにもかかわらず標的病原菌の増殖を促進し、ジェイムソン効果を防止する。標的病原菌が検出アッセイの検出閾値レベルに到達すると、本明細書に記載される通りに行われる培養物中の標的病原菌を検出するために検出アッセイを使用することができる。複数種の標的病原菌を別々にまたは同時に検出することができる。検出アッセイは、ゲノムDNA、リボソームRNA、トランスファーRNA、メッセンジャーRNA、またはタンパク質などの標的病原菌の特徴的細胞成分を抽出し検出することを含み得る。特徴的細胞成分は、標準的な分子生物学的手法または市販品を使用することにより抽出され、寒天プレート、発色性寒天プレート、酵素結合免疫吸着アッセイELISA、免疫クロマトグラフィー、ポリメラーゼ連鎖反応PCR、逆転写PCRRT-PCR、リアルタイムPCR、リアルタイムRT-PCR、核酸配列ベース増幅NASBA、ループ媒介等温増幅LAMP、他の任意の等温核酸増幅、核酸プローブ、および/またはバイオセンサーなどの従来の手法により検出することができる。複数種の標的病原菌を別々に検出するためには、培養物または抽出された特徴的細胞成分は、アリコートに分割されることができ、そのアリコートの各々が標的病原菌の種に特異的な検出アッセイにより試験される。複数種の標的病原菌を同時に検出するためには、培養物または抽出された特徴的細胞成分を、マルチプレックスPCR、マルチプレックスリアルタイムPCR、DNAマイクロアレイ、タンパク質マイクロアレイ、およびルミネックスシステムなどの従来のマルチプレックス病原菌検出アッセイにより試験することができる。本発明の方法は、同一出願人によるPCT出願の国際公開第2009018544号に開示される高多孔質濾過材料および多孔質球状濾過助剤を使用する大容量の微粒子試料のための試料調製方法と組み合わせて使用することができ、この特許文献は参照することによりその全体が本明細書の一部をなすものとする。具体的には、食物ホモジネートおよび環境試料などの大容量の微粒子試料は、試料中の病原菌を固定化することができる高多孔質濾過材料により濾過することができる。濾過材料は、上記のように溶存酸素濃度が制限された増殖培地においてすなわち、酸素不足の培養条件下で培養することができる。増殖培地の最適な体積は、濾過材料のサイズに依存する。最大病原菌濃度を得るためには、固定化された病原菌の増殖を支持するのに十分な最少量の増殖培地を使用するのが好ましい。たとえば、径が47mmの濾過材料では5mL未満または径が70mmの濾過材料では10mL未満が好ましい。培養の終了時には、標的病原菌を増殖培地から回収することができる。標的病原菌の回収率を最大にするためには、濾過材料からの標的病原菌抽出および/または標的病原菌の増殖を促進するように、培養前、培養中、または培養後に、濾過材料を引き裂き、寸断し、砕きまたは切断して小断片にすることができる。増殖培地中の標的病原菌は、上文に記載されるアッセイを使用して検出することができる。競合する微生物大腸菌の非存在下および存在下、好気的および酸素不足の条件において、L.モノサイトゲネスの増殖速度をそれぞれ調べた。[L.モノサイトゲネスの単独培養]6.1cfu/mLのL.モノサイトゲネス4bを播種された2つの5mLのブレインハートインフージョンブロス試料は、それぞれ好気的および酸素不足の条件下、37°C、回転振盪機250rpm上で培養された。好気的条件は、培養中に空気を換気させることにより確立され、酸素不足の条件は空気の換気を妨げることにより確立された。L.モノサイトゲネスの増殖曲線を構築するために、L.モノサイトゲネスは、24時間までのいくつかの培養時点でプレート計数法により検出された。図1Aに示されるように、好気的条件白丸および酸素不足の条件黒丸下で培養された試料間のL.モノサイトゲネスの増殖速度に有意差は観察されなかった。[L.モノサイトゲネスと競合する微生物との同時培養]6.1cfu/mLのL.モノサイトゲネス4bと、8.3×104cfu/mLの大腸菌O1:K1:H8とが播種された2つの5mLのブレインハートインフージョンブロス試料は、単独培養で行われた通りに、それぞれ好気的および酸素不足の条件下、37°C、回転振盪機250rpm上で培養された。L.モノサイトゲネス実線および大腸菌O1:K1:H8点線の増殖曲線を構築するために、L.モノサイトゲネスおよび大腸菌O1:K1:H8は、24時間までのいくつかの培養時点でプレート計数法により検出された。図1Bに示されるように、好気的条件下で培養された試料白丸と比べて酸素不足の条件下で培養された試料黒丸においてL.モノサイトゲネスの増殖は著しく促進された。[L.モノサイトゲネスと競合する微生物との同時培養]6.8cfu/mLのL.モノサイトゲネスと、6.4×104cfu/mLの大腸菌O1:K1:H8とが播種された2つの5mLのブレインハートインフージョンブロス試料は、上記の単独培養で行われた通りに、それぞれ好気的および他の酸素不足の条件下、37°Cで培養された。好気的条件は、回転インキュベーション250rpmを通じて空気を換気させることにより作り出され、酸素不足の条件は、静置インキュベーションを通じて空気の換気を妨げることにより作り出された。L.モノサイトゲネス実線および大腸菌O1:K1:H8点線の増殖曲線を得るために図1C、L.モノサイトゲネスおよび大腸菌O1:K1:H8は、24時間までのいくつかのインキュベーション時点でプレート計数法により検出された。好気的インキュベーション白丸と比べると、L.モノサイトゲネスの増殖は酸素不足のインキュベーション黒丸により著しく促進された。[競合する微生物と同時培養のL.モノサイトゲネスの増殖に対する増殖培地中の溶存酸素濃度の効果]第一組の実験では、1cfu/mLのL.モノサイトゲネス4bと、1×105cfu/mLの大腸菌O1:K1:H8とが播種された3つの5mLのブレインハートインフージョンブロス試料が、それぞれ上から下への空気換気、空気換気なし、および空気換気なしと100μL/mLの寒天用のオキシラーゼOxyrase、OHにより確立された異なる溶存酸素濃度で、37°C、回転振盪機250rpmにおいて培養された。溶存酸素濃度は、空気換気について8.7mg/L、空気換気なしについて8.1mg/L、空気換気なしと100μL/mLの寒天用のオキシラーゼについて0.01mg/L未満と推定された。24時間培養後、L.モノサイトゲネスは、プレート計数法により検出され定量化された。図2に示されるように、L.モノサイトゲネスの増殖は、溶存酸素濃度を下げることにより著しく促進された。第二組の実験では、6.0cfu/mLのL.モノサイトゲネス4bと、7.0×104cfu/mLの大腸菌O1:K1:H8とが播種された3つの5mLのブレインハートインフージョンブロス試料が、それぞれ上から下への空気換気なし、空気換気なしと0.5g/LのL-システイン、および空気換気なしと2.0g/LのL-システインにより確立された異なる溶存酸素濃度で、37°C、回転振盪機250rpmにおいて培養された。溶存酸素濃度は、空気換気なしについて8.1mg/L、空気換気なしと0.5g/LのL-システインについて0.92mg/L、および空気換気なしと2.0g/LのL-システインについて0.01mg/L未満と推定された。24時間培養後、L.モノサイトゲネスは、プレート計数法により検出され定量化された。図3に示されるように、L.モノサイトゲネスの増殖は、溶存酸素濃度を下げることにより著しく促進された。[10牛ひき肉ホモジネートにおけるL.モノサイトゲネスと競合する微生物との同時培養]5mLの10牛ひき肉ホモジネートの2つの試料は、ブレインハートインフージョンブロス中で消化することにより調製され、7.3cfu/mLのL.モノサイトゲネス4bおよび7.9×104cfu/mLの大腸菌O1:K1:H8を播種された。試料は好気的および酸素不足の条件下、37°C、回転振盪機250rpmにおいて培養された。好気的条件は空気を換気させることにより確立された。酸素不足の条件は、空気の換気を妨げ、培養物にブロス用の20μL/mLのオキシラーゼOxyrase、OHを添加することにより確立された。溶存酸素濃度は、好気的条件について8.7mg/L、酸素不足の条件について0.01mg/L未満と推定された。24時間培養後、L.モノサイトゲネスは、プレート計数法により検出され定量化された。図4に示されるように、L.モノサイトゲネスの増殖は、酸素不足の条件下で培養された試料において著しく促進された。5mLのトリプチックソイブロスTSBの2つの試料、5mLのニュートリエントブロスNBの2つの試料、およびブレインハートインフージョンブロスBHI中で消化することにより調製された5mLの10デリミートdelimeatホモジネートの2つの試料であって、それぞれが7.4cfu/mLのL.モノサイトゲネス4b、1.0cfu/mLの大腸菌O157:H7、および7.8×104cfu/mLの大腸菌O1:K1:H8を播種された試料におけるL.モノサイトゲネスと、競合する微生物との同時培養が調べられた。試料は、好気的および酸素不足の条件下、37°C、回転振盪機250rpmにおいて培養された。好気的条件は空気を換気させることにより確立された。酸素不足の条件は、空気の換気を妨げ、ブロス用の100μL/mLのオキシラーゼOxyrase、OHを添加することにより確立された。溶存酸素濃度は、好気的条件について8.7mg/L、酸素不足の条件について0.01mg/L未満と推定された。24時間培養後、L.モノサイトゲネスは、発色性寒天プレートにより検出された。図5に示されるように、L.モノサイトゲネスの増殖は、酸素不足の条件下で培養された試料において著しく促進された。[104cfu/mL超の競合する微生物の組合せとの同時培養における10cfu/mL未満のL.モノサイトゲネスの増殖の向上が調べられた]5mLのブレインハートインフージョンブロス、またはブレインハートインフージョンブロス中で消化することにより調製された10食物ホモジネートは、L.モノサイトゲネス4b、リステリアイノキュアListeriainnocuaL.innocua、サルモネラチフィムリウムSalmonellatyphimurium、大腸菌O157:H7、または大腸菌O1:K1:H8を播種された。試料は、好気的および酸素不足の条件下、37°C、回転振盪機250rpmにおいて培養された。好気的条件は空気を換気させることにより確立された。酸素不足の条件は、空気の換気を妨げ、20μL/mLまたは100μL/mLのブロス用のオキシラーゼまたは寒天用のオキシラーゼOxyrase、OHを添加することにより確立された。溶存酸素濃度は、好気的条件について8.7mg/L、酸素不足の条件について0.01mg/L未満と推定された。24時間培養後、L.モノサイトゲネス4b、L.イノキュア、S.チフィムリウム、大腸菌O157:H7、または大腸菌O1:K1:H8は、プレート計数法により検出され定量化された。L.モノサイトゲネスの増殖は、酸素不足の培養により著しく促進され、S.チフィムリウムおよび大腸菌O157:H7などの他の食物病原菌も同時に検出された図6。本明細書において使用される成分の量、構成要素、反応条件等を表すいかなる数字も、あらゆる場合に用語約aboutに修飾されていると理解されるべきである。記載されている数値の範囲およびパラメータ、本明細書に提示される事項の広い範囲は近似値であるが、記載されている数値はできる限り正確に示されている。しかし、いかなる数値も本質的に、それぞれの測定法に見出される標準偏差から明らかなように、いくらかの誤差または不正確さを含む可能性がある。本明細書に列挙される特質はどれも、用語意味するmeansが明確に使用されていなければ、35U.S.C.§112,¶6を想起するものと解釈されるべきではない。本発明はその好ましい実施形態と関連して説明されてきたが、本発明の趣旨と範囲から逸脱することなく、具体的に記載されていない付加、欠失、変更および置換を行い得ることは当業者により認識されるであろう。"