"ポリアミンを有効成分として含む、破骨細胞への分化及び/又は破骨細胞の増殖が関与する疾患の予防剤及び/又は治療剤。ポリアミンが、第一級アミノ基を5つ以上有する脂肪族炭化水素からなる群より選択される少なくとも1種以上の化合物である、請求項1に記載の予防剤及び/又は治療剤。ポリアミンが、スペルミンまたはスペルミジンから選択される少なくとも1種以上の化合物である、請求項1又は2に記載の予防剤及び/又は治療剤。ポリアミンが破骨細胞への分化及び/又は破骨細胞の増殖に対する阻害作用を有する、請求項1~3のいずれか1に記載の予防剤及び/又は治療剤。ポリアミンによる破骨細胞への分化及び/又は破骨細胞の増殖に対する阻害作用が、ポリアミンが、ReceptoractivatorofnuclearfactorκBligandRANKLによるNuclearfactorκBNFκBの活性化を抑制することによるものである、請求項4に記載の予防剤及び/又は治療剤。破骨細胞への分化及び/又は破骨細胞の増殖が関与する疾患が、骨粗鬆症又は関節炎である請求項1~5のいずれか1に記載の予防剤及び/又は治療剤。骨量減少の予防及び/又は治療のために用いる、請求項1~6のいずれか1に記載の予防剤及び/又は治療剤。ポリアミンを有効成分とする、破骨細胞への分化及び/又は破骨細胞の増殖に対する阻害剤。請求項8に記載の阻害剤を含む、破骨細胞への分化及び/又は破骨細胞の増殖に対する阻害作用を有する、経口投与用製剤。本発明は、破骨細胞への分化及び/又は破骨細胞の増殖が関与する疾患の新規な予防剤及び/又は治療剤を提供することを課題とする。本発明者らは上記課題を解決するために鋭意検討した結果、ポリアミンが破骨細胞への分化及び/又は破骨細胞の増殖に対して阻害作用を有することに着目し、本発明を完成した。すなわち、本発明は以下の通りである。1.ポリアミンを有効成分として含む、破骨細胞への分化及び/又は破骨細胞の増殖が関与する疾患の予防剤及び/又は治療剤。2.ポリアミンが、第一級アミノ基を5つ以上有する脂肪族炭化水素からなる群より選択される少なくとも1種以上の化合物である、前項1に記載の予防剤及び/又は治療剤。3.ポリアミンが、スペルミンまたはスペルミジンから選択される少なくとも1種以上の化合物である、前項1又は2に記載の予防剤及び/又は治療剤。4.ポリアミンが破骨細胞への分化及び/又は破骨細胞の増殖に対する阻害作用を有する、前項1~3のいずれか1に記載の予防剤及び/又は治療剤。5.ポリアミンによる破骨細胞への分化及び/又は破骨細胞の増殖に対する阻害作用が、ポリアミンが、ReceptoractivatorofnuclearfactorκBligandRANKLによるNuclearfactorκBNFκBの活性化を抑制することによるものである、前項4に記載の予防剤及び/又は治療剤。6.破骨細胞への分化及び/又は破骨細胞の増殖が関与する疾患が、骨粗鬆症又は関節炎である前項1~5のいずれか1に記載の予防剤及び/又は治療剤。7.骨量減少の予防及び/又は治療のために用いる、前項1~6のいずれか1に記載の予防剤及び/又は治療剤。8.ポリアミンを有効成分とする、破骨細胞への分化及び/又は破骨細胞の増殖に対する阻害剤。9.前項8に記載の阻害剤を含む、破骨細胞への分化及び/又は破骨細胞の増殖に対する阻害作用を有する、経口投与用製剤。本発明のポリアミンを有効成分とする、破骨細胞への分化及び/又は破骨細胞の増殖が関与する疾患の新規な予防剤及び/又は治療剤は、破骨細胞への分化及び/又は破骨細胞の増殖に対する阻害作用を有している。本発明の予防剤及び/又は治療剤は、特に骨粗鬆症における骨量減少の抑制のためや、関節炎の重症化抑制のために用いることができる。また本発明の予防剤及び/又は治療剤によれば、関節炎における浮腫発症を遅延させることもできる。本発明の予防剤及び/又は治療剤は、破骨細胞の細胞生存率に影響することがなく、また骨芽細胞の分化、増殖、細胞生存率に影響することもなく、細胞毒性が軽減化されたものである。さらに本発明の予防剤及び/又は治療剤は、経口投与された場合にマウスの子宮重量を増大させることがないため、副作用が軽減化されたものである。本発明においてポリアミンとは、2つ以上の第1級アミノ基を有する脂肪族炭化水素の総称で生体内に普遍的に存在する天然物である。本発明においてポリアミンとは、ポリアミンの種々の誘導体および種々の塩を含む。現在、20種類以上のポリアミンが見出されており、例えば、1,3-ジアミノプロパン、プトレシン、カダベリン、カルジン、スペルミジン、ホモスペルミジン、アミノプロピルカダベリン、テルミン、スペルミン、テルモスペルミン、カナバルミン、アミノペンチルノルスペルミジン、N,N-ビスアミノプロピルカダベリン、ホモスペルミン、カルドペンタミン、ホモカルドペンタミン、カルドヘキサミン、ホモカルドヘキサミンなどが挙げられる。本発明において好ましいポリアミンは、第一級アミノ基を5つ以上有するポリアミンであり、特に好ましくはスペルミジンSPD、スペルミンSPMである。スペルミジンは代表的なポリアミンの一つで生物体内に普遍的に存在する一般的な天然物であり、3つの第一級アミノ基を有する脂肪族炭化水素化合物である。スペルミンは代表的なポリアミンの一つで生物体内に普遍的に存在する一般的な天然物であり、4つの第一級アミノ基を有する脂肪族炭化水素化合物である。本発明は、ポリアミンを有効成分とする破骨細胞への分化及び/又は破骨細胞の増殖が関与する疾患の予防剤及び/又は治療剤を包含する。本発明における破骨細胞とは、ヒトまたはヒト以外の哺乳動物を含む脊椎動物の破骨細胞であれば特に限定されない。破骨細胞は、骨の表面に密着し、活性化に伴い酸や種々のプロテアーゼ等を分泌することにより骨吸収能を示す。破骨細胞は活性化及び/又は増殖することにより、骨や軟骨の破壊を促進することが知られている。本発明でいう破骨細胞への分化及び/又は破骨細胞の増殖とは、細胞が形態的に破骨細胞の性質を示すように分化形成されること、または、その形態学的な変化を経て活性化され骨吸収作用を示すように分化形成されること、形態学的または作用的に破骨細胞の性質を示す細胞が増殖することを含む概念である。ポリアミンは、破骨細胞への分化及び/又は破骨細胞の増殖を抑制することにより、破骨細胞への分化及び/又は破骨細胞の増殖が関与する疾患を予防及び/又は治療し得る。本発明における抑制とは阻害と同意義で用いられ、本発明における破骨細胞への分化及び/又は破骨細胞の増殖の抑制とは前駆破骨細胞が破骨細胞に分化し、その結果破骨細胞が増殖することを100抑制阻止する場合と、100阻止しなくても前駆破骨細胞が本来有する破骨細胞への分化能を低減させる場合の両方を含む。破骨細胞への分化及び/又は増殖は、破骨細胞の特徴である多核細胞の形成を観察することにより測定することができる。破骨細胞への分化及び/又は増殖は、破骨細胞のマーカーである酒石酸耐性酸性ホスファターゼTRAP染色法を用いることや、破骨細胞のマーカー遺伝子、例えば、Ctsk、Calcr、Acp5、Mmp9、DCSTAMPTm7sf4等のmRNA発現量を測定することにより確認することができるが、これらに限定されない。破骨細胞への分化及び/又は破骨細胞の増殖のメカニズムとして、ReceptoractivatorofnuclearfactorκBligandRANKLによりNuclearfactorκBNFκBを活性化することにより、NFκBの経路が刺激され、破骨細胞への分化及び/又は破骨細胞の増殖が促進されることが知られている。RANKLは、TNFスーパーファミリーに属する膜結合型蛋白であり、骨芽細胞などの破骨細胞形成支持細胞の表面上に発現し、細胞接触を介して前駆細胞にシグナルを伝達し、破骨細胞への分化を誘導する。関節リウマチ等においては、滑膜線維芽細胞におけるRANKLの発現が、関節における骨軟骨破壊に重要な役割を果たしていると考えられている。RANKLにより刺激される経路として、上述のNFκBの経路以外に、細胞外シグナル調節キナーゼERKやプロテインキナーゼBAktを介した経路も報告されている。NFκBを構成するp100とp105のノックアウトマウスが骨大理石症を呈することから、NFκBの経路が、破骨細胞の分化に必須と考えられている。本発明においてポリアミンは、RANKLによるNFκBの経路の刺激を抑制し、破骨細胞への分化及び/又は破骨細胞の増殖を抑制することが新規に見出された。ポリアミンがNFκB経路を選択的に阻害することから、本発明の治療剤及び/又は予防剤は阻害経路選択性を有しており、より有効に破骨細胞の分化及び/又は破骨細胞の増殖を抑制することが可能であると考えられる。ポリアミンは、破骨細胞の細胞生存率には実質的に影響を与えない。また、骨芽細胞の分化、増殖、生存率に対しても、実質的に影響を与えないものである。すなわちポリアミンは細胞毒性を実質的に有さないものである。また、ポリアミンは生体に投与された場合でも子宮重量を増大させることがなく、副作用が軽減化されたものである。本発明において、破骨細胞への分化及び/又は破骨細胞の増殖が関与する疾患としては、例えば、閉経後骨粗鬆症、老人性骨粗鬆症、ステロイド治療による骨粗鬆症等の骨粗鬆症、関節炎又は悪性腫瘍などを挙げることができるが、これらの疾患に限定されることはない。なお、本明細書では慢性関節リウマチ、変形関節炎等の関節炎を伴う疾患を関節炎と称する。特に好適には、本発明の予防剤及び/又は治療剤は、閉経後骨粗鬆症や関節炎に用いられる。また本発明の予防剤及び/又は治療剤は、骨粗鬆症における骨量減少の抑制や、関節炎における関節の骨軟骨破壊の進行を抑制し重症化を予防するために用いることができる。さらに本発明の予防剤及び/又は治療剤によれば、関節炎における浮腫発症を遅延させることもでき、有用である。本発明の予防剤及び/又は治療剤は、有効成分であるポリアミンを単独で投与してもよいが、他の有効成分や、医薬の製造に通常用いられる1種又は2種以上の製剤用添加物例えば賦形剤、崩壊剤、結合剤、滑沢剤、分散化剤、又は香料などと混合して、医薬組成物として調製して用いてもよい。本発明の予防剤及び/又は治療剤は、常法により、液剤、錠剤、顆粒剤、散剤、カプセル剤、ドライシロップ剤、チュアブル剤等の経口投与用の医薬組成物として調製することができる。また、注射剤や坐剤などの非経口投与用の医薬組成物として調製してもよい。本発明の予防剤及び/又は治療剤におけるポリアミンの濃度は、1nM~100μM、好ましくは100nM~10μMであることが好ましい。本発明の予防剤及び/又は治療剤の投与量は特に限定されず、患者の体重、性別、及び年齢等の条件、予防又は治療の目的、対象疾患の種類、投与経路などの条件に応じて適宜選択できる。標準的には、成人1日当たり約10mg~約10gを、経口的または非経口的に1日1回~数回にて投与すればよい。本発明の予防剤及び/又は治療剤の投与経路は特に限定されず、経口投与又は非経口投与例えば、静脈内投与、筋肉内投与、皮下投与、皮内投与、粘膜投与、直腸内投与、膣内投与、患部への局所投与、皮膚投与等のいずれの投与経路により投与してもよい。好ましくは本発明の予防剤及び/又は治療剤は、経口投与されることが好ましく、経口投与用製剤として調製される。本発明の経口投与用製剤は、医薬品としてだけではなく、破骨細胞への分化及び/又は破骨細胞の増殖に関与する疾患の予防及び/又は治療を目的とした医薬部外品として提供することもでき、例えば、容器詰ドリンク飲料等の飲用形態、或いはタブレット、カプセル、顆粒等の形態とし、できるだけ摂取し易い形態として提供するのが好ましい。本発明は、ポリアミンを有効成分とする、破骨細胞への分化及び/又は破骨細胞の増殖の阻害剤に関するものである。本発明の阻害剤は、invivoまたはinvitroのいずれで用いられてもよい。本発明の阻害剤において、有効成分であるポリアミンの濃度は、特に限定されず、破骨細胞への分化及び/又は破骨細胞の増殖を阻害し得る量であればよい。好ましくはポリアミンの濃度は、1nM~100μMであり、より好ましくは100nM~10μMである。本発明の阻害剤は、上述の予防剤及び/又は治療剤と同様の手法により、経口投与用製剤として調製されてもよい。以下の実施例により本発明をさらに具体的に説明するが、本発明は実施例によって限定されるものではない。なお本実施例は金沢大学動物実験指針に基づいて行った。まず、以下の実施例1~4において用いた実験方法の手順と、材料について説明する。卵巣摘出OVX手術と骨の組織形態学的解析ddYマウスを、標準的な12:12明暗周期でケージ内において、飼料と飲水は自由に摂取できるようにして、飼育した。8週齢のマウスを、ペントバルビタール50mgkgの腹腔内注射により麻酔した。UnoetalJPharmacolSci115309319に記載の方法に従って、無菌下でOVX手術と、シャム手術卵巣摘出疑似手術を行った。OVXマウスに03mMもしくは3mMの濃度で飲水に溶解したSPDもしくはSPMを、毎日、経口投与した。マウスを、手術28日後に骨頭摘出により屠殺し、その後大腿骨、脛骨、脊椎骨に解剖して、10ホルマリンもしくは70エタノールにより固定した。骨の組織形態学的解析を、KajimuraetalJExpMed208841851に記載の方法に従って、脱灰されていない脊椎骨について行った。簡単に説明すると、脊椎骨を10ホルマリンで固定し、種々の濃度のエタノールにより脱水し、標準的なプロトコールに従って、メチルメタクリレート樹脂に包埋した。組織体積に対する骨体積の割合BVTVは、VonKossa染色により測定した。骨形成速度Boneformationrate:BFRは、カルセイン二重標識法により解析した。カルセインは3日間の間隔を開けて2度マウスに注射され、その後最後の注射から2日後にマウスを屠殺した。骨芽細胞と破骨細胞のパラメーターはそれぞれ、トルイジンブルーもしくは酒石酸耐性酸性ホスファターゼTRAPにより染色し解析した。解析は、OsteomeasureAnalysisSystemを用いて、ParfittetalJBoneMinerRes2595610に記載の方法に従って行った。破骨細胞の培養とTRAP染色初代培養破骨細胞を、HinoietalAmJPathol17012771290の方法に従って、骨髄から調製した。かかる初代培養骨芽細胞マウス骨髄単球から破骨細胞へ分化させた細胞を、20ngmlのマクロファージコロニー刺激因子MCSFと、20ngmlのReceptoractivatorofnuclearfactorκBligandRANKLの存在下で、5日間連続して培養した。前駆破骨細胞RAW2647細胞を、20ngmlRANKL存在下で、4日間連続して培養した。TRAP染色については、培養した細胞を、リン酸緩衝生理食塩水PBS中の10ホルマリンと、エタノールアセトン5050vvにより固定した。その後、細胞を50mmolLの酒石酸ナトリウムの存在下で、基質としてのリン酸ナフトールASMXと、色素としてのfastredvioletLBsaltを含む酢酸緩衝液pH50中でインキュベートした。5個以上の核を有するTRAP陽性細胞を、TRAP陽性多核細胞MNCsとして評価した。細胞生存率の測定培養した細胞をPBSで洗浄し、05mgmlの325diphenyl2HtetrazoliumbromideMTTでインキュベートし、その後ウェルにイソプロピルアルコール中の004MHClを添加し、ホルマザンを溶解するため混合物を懸濁した。懸濁物を酵素免疫定量法のリーダーで、波長550nmにおける吸光度を測定した。リアルタイム定量的RTPCRトータルRNAを細胞から抽出し、逆転写酵素と、オリゴdTプライマーを用いてcDNAを合成した。cDNA試料を、各遺伝子に特異的なプライマーを用いたリアルタイムPCR解析MX3005PinstrumentAgilentTechnologiesSantaClaraCAUSAの鋳型として使用した。遺伝子の発現量は、内部標準として36b4遺伝子の発現量を用いて、各試料について補正した。骨芽細胞の培養と、アルカリホスファターゼALP活性とCa2蓄積量の測定初代培養骨芽細胞マウス頭蓋骨から調製した細胞を、UnoetalJPharmacolSci115309319に記載の方法に従って、連続的に酵素によって消化する方法により、1日齢もしくは2日齢のマウスの頭蓋冠から調製した。前駆骨芽細胞MC3T3E1細胞を、分化用カクテル50μgmlアスコルビン酸および5mMβグリセロフォスフェートの存在下で培養した。ALP活性およびCa2蓄積量はUnoetalJPharmacolSci115309319に記載の方法に従って測定した。簡単に説明すると、骨芽細胞を01TritonX100により可溶化し、可溶化物中のALP活性を基質としてpニトロフェノールリン酸を用いて測定した。可溶化物を、1624時間塩酸により処理し、20000×gで遠心し、市販のキットを用いて上清のCa2蓄積量を測定した。ルシフェラーゼアッセイ細胞をレポーターベクターにより形質転換した。その後細胞の可溶化物を調製し、ルミノメーターATTOTokyoJapanにより特定の基質を用いてルシフェラーゼ活性を測定した。形質転換効率は、Renillaluciferaseの活性を測定することにより補正した。イムノブロッティングアッセイ培養した細胞を、1NonidetP40を含む溶解バッファー中に可溶化した。試料をドデシル硫酸ナトリウムポリアクリルアミドゲル電気泳動に供し、ニトロセルロース膜に転写し、UnoetalJPharmacolSci115309319に記載の方法に従ってイムノブロッティングアッセイを行った。定量は、ImageJを用いてデンシトメトリーにより行った。データ解析結果は全て平均±SEで示し、統計学的有意差はtwotailedおよびunpairedのStudentのt検定、またはBonferroniDunnettのposthoc検定による一元配置分散分析onewayanalysisofvarianceANOVAにより検定した。材料PUT、SPD、SPM、カルセイン、ナフトールASMXリン酸、fastredvioletLurinaBertanisaltは、SigmaStLouisMOUSAより購入した。組み換えマウスMCSF、組み換えマウスRANKLはRDSystemsInternationalMinneapolisMNUSAから購入した。以下の抗体はすべてCellSignalingTechnologyから購入した:抗グリセルアルデヒド3リン酸デヒドロゲナーゼGAPDH抗体、抗リン酸化p65抗体、抗p65抗体、抗リン酸化κB阻害因子IκB抗体、抗IκB抗体。二重ルシフェラーゼアッセイシステムおよびRNase不含DNaseはPromegaMadisonWIUSAから購入した。pNFκBLucはStratageneLaJollaCAUSAより得た。MMLV逆転写酵素はInvitrogenCarlsbadCAUSAより得た。THUNDERBIRDSYBRqPCRMixは東洋紡績株式会社TOYOBOOsakaJapanより得た。ISOGENおよびcalciumCtestキットは、和光純薬工業株式会社WAKOOsakaJapanより得た。他の化合物は、高純度の市販品を用いた。実施例1OVX誘導骨減少と破骨細胞活性化に対するSPDとSPMの阻害効果の確認SPDもしくはSPMのいずれかを、卵巣摘出マウス閉経後モデルマウスに、経口投与した。その後、組織形態学的パラメータに加えて、組織体積に対する骨体積の割合BVTVを測定した。OVXでは劇的に子宮の重量が減少したが、SPDもしくはSPM投与群では、OVXにより誘導される子宮重量の減少に影響を与えなかった図1A。これらの実験の条件下では、シャム手術マウス群に比べて、卵巣摘出マウス群の脊椎の海綿骨におけるBVTVの著しい減少が見られた図1B,C。SPDもしくはSPMのいずれかの投与は、卵巣摘出マウスの海綿骨のBVTVの減少を有意に抑制し、一方、シャム手術マウス群では全く影響が見られなかった図1B,C。SPDおよびSPMの骨減少への予防的効果の細胞レベルでのメカニズムを明らかにするために、組織形態学的な解析を脊椎について行った。卵巣摘出マウスでは、骨表面に対する破骨細胞表面の割合OcSBSは優位に増加しており、骨周囲長さに対する骨芽細胞数の割合NobBPmと、脊椎骨における骨形成速度BFRは著しく上昇していた図2A~C。SPDもしくはSPMのいずれかの卵巣摘出マウスへの投与は、脊椎におけるOcSBの有意な増加を防ぐが図2A、NobBPmおよびBFR等の骨芽細胞に関するパラメータの顕著な上昇には影響を与えなかった図2B,C。BVTVの結果によれば、シャム手術群へのSPDもしくはSPMの投与による組織形態学な影響は見られなかった図2A~C。SPDもしくはSPMのいずれかの経口投与が、invivoで卵巣摘出マウスにおいて、骨芽細胞に影響を与えることなく、破骨細胞の関与するパラメータOcSBSSの増加を有意に抑制することが確認された。実施例2SPDおよびSPMの、RANKL誘導破骨細胞分化の阻害効果SPDもしくはSPMの骨吸収をする破骨細胞の細胞分化および成熟に対する影響を確認した。前駆破骨細胞のRAW2647細胞を、RANKLの存在下で、1nMから1μMのSPD、SPM、またはPUTとともに、4日間培養し、その後TRAP染色および、TRAP陽性の多核細胞MNCの数を計数した。SPDもしくはSPMの添加は、それぞれ100nMもしくは10nMを超えた濃度で、濃度依存的に、TRAP陽性の多核細胞の数を著しく減少させた図3A、B。破骨細胞分化の阻害において、細胞生存率が関与するかを確認するために、RAW2647細胞をRANKLの存在下でSPDもしくはSPMと共に培養し、MTTアッセイを行った。H2O2への暴露は、RAW2647細胞においてMTT活性を著しく減少させたが、SPDもしくはSPMによる処理では、MTT活性の減少は見られなかった図3A,B。さらに、ヨードプロピジウム陽性細胞は、SPDもしくはSPMで処理したRAW2647細胞には全く見られなかった。1nMから1μMの濃度のPUTはTRAP陽性MNCの数と同様に細胞生存率に影響しなかった図3C。さらに、SPDもしくはSPMのいずれかの添加は、RANKL誘導破骨細胞分化を有意に阻害したが、初代培養破骨細胞マウス骨髄単球から破骨細胞へと分化させた細胞およびRAW2647細胞の細胞生存率には影響を与えなった。さらに上記と同様にして細胞を培養した後、細胞からRNAを抽出し、各種遺伝子発現の解析を行った。1μMのSPDもしくはSPMで処理した場合は、数種の破骨細胞マーカー遺伝子Ctsk、Calcr、Acp5、Mmp9、DCSTAMPとして知られるTm7sf4のmRNA発現量が著しく減少していた図3D。実施例3天然ポリアミンの細胞生存率、骨芽細胞の分化成熟への影響の確認天然ポリアミンの骨芽細胞への機能を確認するために、前駆骨芽細胞のMC3T3E1細胞を、10nMから1μMのSPD、SPMまたはPUTと共に、分化カクテルの存在下で、28日までの種々の期間、培養をした。その後、MTT活性により細胞生存率を確認し、ALP活性により細胞分化度を確認し、Ca2の蓄積量により細胞成熟度を確認した。図4A~Cにおいてみられるように、これらの化合物はいずれも、どの濃度においても、MC3T3E1細胞の細胞生存率、ALP活性に影響を与えなかった図4A~C。また、これらの化合物はいずれも、骨芽細胞の成熟度Ca2蓄積量に影響を与えなかった図4D。さらに、これらの3つのポリアミンの継続的な処理は、初代培養骨芽細胞におけるALP活性およびCa2蓄積量に影響しなかった。実施例4SPDおよびSPMによる、破骨細胞におけるNFκBの転写因子活性の阻害効果の確認RANKLは、NFκBの活性化を介した細胞内シグナル伝達経路を刺激することにより、破骨細胞の分化を促進することが知られている。SPDもしくはSPMによる破骨細胞分化阻害のメカニズムの検討のため、前駆破骨細胞のRAW2647細胞をpNFκBLuc5個のNFκB結合配列を含むルシフェラーゼレポータープラスミドにより、一過的形質転換をした。RANKLの存在下で、SPDもしくはSPMにより処理を行い、ルシフェラーゼ活性を測定した。50ngmlでRANKLを添加した場合は、形質転換された細胞においてルシフェラーゼ活性が3倍になった。RANKLの存在下で、1μMより高い濃度のSPDもしくはSPMを添加した場合は、RANKLによるルシフェラーゼ活性の上昇を有意に阻害した図5A。さらに破骨細胞におけるRANKLにより開始されるシグナル伝達経路に対するSPDもしくはSPMの影響を確認した。RANKLの存在に関わらず、SPDもしくはSPMのいずれかによる処理は、p65およびIκBのリン酸化に影響しなかった。図5Bは5分間処理を行った場合の写真である。すなわちSPDやSPMは、NFκBのシグナルを制御するIκBや、p65NFkB構成因子の一つには影響しなかった。さらにERK、JNK、もしくはAktのリン酸化に対するSPDもしくはSPMの影響を確認したところ、RANKLの存在に関わらず影響は見られなかった。RANKLにより開始されるシグナル伝達経路として、NFκBを介した経路以外に、ERKやJNK、Aktを介した経路が知られているが、SPDおよびSPMは、ERK等を介した経路には影響を与えないことがわかった。実施例5コラーゲン誘導関節炎Collageninducedarthritis:CIA動物モデルにおける、浮腫増大とRANKL発現量増加に対する、SPDとSPMの阻害効果の確認CIA動物モデルにSPDまたはSPMを経口投与し、体重、足の容積、軟骨または関節滑液におけるRANKL等の発現量を測定した。CIA動物モデルの作製とSPDまたはSPMの経口投与ルイスLewisラット雌を、標準的な12:12明暗周期でケージ内において、飼料と飲水は自由に摂取できるようにして、飼育した。図6に示すように、8週齢のラットに、実験開始0日目、7日目、14日目に、TypeIIコラーゲンと、完全フロイントアジュバントの混合物であるエマルジョンを、ラットの背中あるいは尾部付近に皮内投与したコラーゲン1mgmL最終濃度を05mL投与。また、実験開始0日目から28日目まで、3mMの濃度で飲水に溶解したSPDもしくはSPMを、毎日、同じラットに経口投与した各々CIASPDラット、もしくはCIASPMラットと称する。コントロールとして、SPDおよびSPMを溶解していない飲水を与えたラットを、関節炎を呈しているCIA動物モデルCIAラットとした。また、コラーゲンを皮内投与していないラットを正常Normalラットとした。正常ラットには、SPDおよびSPMを溶解していない飲み水を与えた。実験開始0日目から28日目まで、7日間ごとに各ラットの体重を測定した。実験開始28日目に、CIAラットから軟骨または関節滑液を採取した。リアルタイム定量的RTPCRトータルRNAを細胞から抽出し、逆転写酵素と、オリゴdTプライマーを用いてcDNAを合成した。cDNA試料を、各遺伝子TNFα、IL1β、RNAKL、MMP13、ColII、ColXに特異的なプライマーを用いたリアルタイムPCR解析MX3005PinstrumentAgilentTechnologiesSantaClaraCAUSAの鋳型として使用した。遺伝子の発現量は、内部標準として36b4遺伝子の発現量を用いて、各試料について補正した。CIA動物モデルの足の容積の測定各種ラットの足後肢の容積を、足容積測定試験装置を用いて測定した。関節炎発症の基準を用いて4段階で評価0:変化なし、1:足指の腫脹、2:足指および足裏の腫脹、3:足全体の腫脹、4:重度の腫脹することにより、足の容積のスコア化を行った。データ解析結果は全て平均±SEで示し、統計学的有意差はtwotailedおよびunpairedのStudentのt検定、またはBonferroniDunnettのposthoc検定による一元配置分散分析onewayanalysisofvarianceANOVAにより検定した。材料SPD、SPMは、SigmaStLouisMOUSAより購入した。ルイスLewisラットはCharlesRiverから購入した。MMLV逆転写酵素はInvitrogenCarlsbadCAUSAより得た。THUNDERBIRDSYBRqPCRMixは東洋紡績株式会社TOYOBOOsakaJapanより得た。他の化合物は、高純度の市販品を用いた。各種ラットの体重を測定した結果を図7に示す。SPDもしくはSPMを投与していないCIAラットでは、既報のとおりTrenthametalJExpMed1977体重減少が認められた。SPDもしくはSPMを投与した場合も同様に、体重減少が認められた。各種ラットから実験開始28日目に採取した軟骨における、各種mRNA発現量を確認した結果を図8に示す。SPDもしくはSPMを投与していないCIAラットでは、TNFαおよびRANKLの発現量が増大しており、IL1βの発現量が減少していた。MMP13、ColII、ColXの発現量については有意な変化は認められなかった。SPDおよびSPMを投与した場合、TNFα発現量の増大、IL1β発現量の減少には影響が認められなかったが、SPMを投与した場合においてのみ、RANKL発現量の増大の抑制が認められた。なお、MMP13、ColII、ColXについてもSPDもしくはSPMを投与による影響は認められなかった。各種ラットから採取した関節滑液における、各種mRNA発現量を確認した結果を図9に示す。SPDもしくはSPMを投与していないCIAラットでは、TNFαおよびRANKLの発現量が増大しており、IL1βの発現量には有意な差は認められなかった。SPDおよびSPMを投与した場合、TNFα発現量の増大、IL1β発現量には有意な変化が認められなかったが、RANKL発現量の増大の抑制が認められた。関節炎では、SPDまたはSPMがRANKL発現量の増大を抑制することにより、破骨細胞の分化及び/又は増殖を抑制し、関節の骨軟骨破壊の進行を抑制し得ると考えられた。各種ラットの足の容積浮腫を測定した結果を図10に示す。ラットの足の容積左図では、既報のとおり足の容積が増大していた。SPMを投与した場合は実験開始14日後に、足の容積の増大の抑制が認められた。また、ラットの足の浮腫の程度をスコア化したところ右図、SPMを投与した場合は実験開始14日後および21日後に、足の浮腫程度の減弱が認められた。関節炎による足の浮腫発症が、SPMにより遅延されることがわかった。"