少なくとも2種類の油を含有してなる昆虫防除用組成物であって、該組成物がチラミン受容体、Or83b嗅覚受容体及びOr43a嗅覚受容体の中から選択される昆虫の少なくとも1種の受容体を標的とし、該昆虫においてcAMP、Ca2又はこの両方の細胞内濃度の変化をもたらすものである昆虫防除用組成物。少なくとも2種類の油が、tアネトール、ブラックシードオイル、カンフェン、カルバクロール、dカルボン、lカルボン、18シネオール、pシメン、フタル酸ジエチル、オイゲノール、ゲラニオール、クエン酸イソプロピル、レモングラス油、ライラックフラワー油、ライム油、dリモネン、アントラニル酸リナリル、リナロール、リンデノール、クエン酸メチル、ジヒドロジャスモン酸メチル、ミルセン、ペリリルアルコール、フェニルアセトアルデヒド、αピネン、βピネン、ピペロナール、ピペロニル、酢酸ピペロニル、ピペロニルアルコール、ピペロニルアミン、キニーネ、サビネン、αテルピネン、テルピネン900、αテルピネオール、γテルピネオール、2tertブチルpキノン、αツヨン、タイム油、及びチモールの中から選択される油からなるものである請求項1に記載の組成物。前記組成物を用いた処理が忌避効果を有するものである請求項2に記載の組成物。前記組成物を用いた処理が殺虫効果を有するものである請求項2に記載の組成物。さらに少なくとも1種の不揮発性油を含有してなる請求項2に記載の組成物。少なくとも1種の不揮発性油が、ヒマシ油、トウモロコシ油、クミン油、鉱油、オリーブ油、落花生油、サフラワー油、ゴマ油、及びダイズ油の中から選択される油である請求項5に記載の組成物。選択される油がライラックフラワー油;ゲラニオール、及びタイム油からなるものである請求項2に記載の組成物。前記の油がライラックフラワー油;ゲラニオール、タイム油及びからなるものである請求項3に記載の組成物。選択される油がライラックフラワー油、ゲラニオール、タイム油及びクミン油からなるものである請求項6に記載の組成物。選択される油がライラックフラワー油約44重量、ゲラニオール約10重量、タイム油約2重量及びクミン油約44重量からなるものである請求項9に記載の組成物。選択される油がdリモネン、タイム油、ゲラニオール、αピネン、及びpシメンからなるものである請求項1に記載の組成物。選択される油がdリモネン、タイム油、ゲラニオール、αピネン、及びpシメンからなるものである請求項3に記載の組成物。選択される油がdリモネン約20重量、タイム油約20重量、ゲラニオール約20重量、αピネン約20重量、及びpシメン約20重量からなるものである請求項11に記載の組成物。さらにフェニルアセトアルデヒドを含有してなる請求項11に記載の組成物。さらにフェニルアセトアルデヒドを含有してなる請求項12に記載の組成物。選択される油がdリモネン約10重量、タイム油約30重量、ゲラニオール約35重量、αピネン約10重量、フェニルアセトアルデヒド約5重量からなるものである請求項14に記載の組成物。選択される油がゲラニオール、タイム油、及びレモングラス油からなるものである請求項2に記載の組成物。選択される油がゲラニオール、タイム油、及びレモングラス油からなるものである請求項3に記載の組成物。選択される油がゲラニオール約50重量、タイム油約40重量、及びレモングラス油約10重量からなるものである請求項17に記載の組成物。選択される油がdリモネン、リンデノール、オイゲノール、フェニルアセトアルデヒド、及びゲラニオールからなるものである請求項2に記載の組成物。選択される油がdリモネン、リンデノール、オイゲノール、フェニルアセトアルデヒド、及びゲラニオールからなるものである請求項3に記載の組成物。選択される油がdリモネン約20重量、リンデノール約10重量、オイゲノール約10重量、フェニルアセトアルデヒド約10重量、及びゲラニオール約50重量からなるものである請求項20に記載の組成物。選択される油がdリモネン、ゲラニオール、αピネン、pシメン、及びフェニルアセトアルデヒドからなるものである請求項2に記載の組成物。選択される油がdリモネン、ゲラニオール、αピネン、pシメン、及びフェニルアセトアルデヒドからなるものである請求項3に記載の組成物。選択される油がdリモネン約15重量、ゲラニオール約50重量、αピネン約15重量、pシメン約15重量、及びフェニルアセトアルデヒド約5重量からなるものである請求項23に記載の組成物。選択される油がdリモネン及びpシメンからなるものである請求項2に記載の組成物。選択される油がdリモネン、pシメン、及びαピネンからなるものである請求項2に記載の組成物。選択される油がdリモネン及びαピネンからなるものである請求項2に記載の組成物。選択される油がdリモネン及びタイム油からなるものである請求項2に記載の組成物。選択される油がαピネン及びタイム油からなるものである請求項2に記載の組成物。選択される油がpシメン、αピネン及びタイム油からなるものである請求項2に記載の組成物。選択される油がpシメン及びαピネンからなるものである請求項2に記載の組成物。選択される油がリナロール、pシメン、タイム油、及びαピネンからなるものである請求項2に記載の組成物。選択される油がリナロール、pシメン、及びαピネンからなるものである請求項2に記載の組成物。選択される油がdリモネン、pシメン、及びチモールからなるものである請求項2に記載の組成物。選択される油がdリモネン、pシメン、チモール及びゲラニオールからなるものである請求項2に記載の組成物。選択される油がαツヨン、αピネン、サビネン、βピネン、pシメン及びリモネンからなるものである請求項2に記載の組成物。選択される油がαツヨン、αピネン、サビネン、βピネン、pシメン及びリモネンからなるものである請求項3に記載の組成物。選択される油がフタル酸ジエチル、αテルピネオール、ピペロナール、リナロール、γテルピネオール、ジヒドロジャスモン酸メチル、クエン酸メチル及びクエン酸イソプロピルからなるものである請求項2に記載の組成物。選択される油がフタル酸ジエチル、αテルピネオール、ピペロナール、リナロール、γテルピネオール、ジヒドロジャスモン酸メチル、クエン酸メチル及びクエン酸イソプロピルからなるものである請求項3に記載の組成物。選択される油がdリモネン及びpシメン、αピネン、タイム油、リナロール、チモール、及びゲラニオールの中から選択される少なくとも2種の油からなるものである請求項2に記載の組成物。選択される油がdリモネン及びpシメン、αピネン、タイム油、リナロール、チモール、及びゲラニオールの中から選択される少なくとも2種の油からなるものである請求項3に記載の組成物。組成物がdリモネン、pシメン、αピネン、タイム油、チモール、ゲラニオール、レモングラス油、ブラックシードオイル、ライラックフラワー油、鉱油、及びフェニルアセトアルデヒドの中から選択される少なくとも2種の油を含有してなるものである請求項2に記載の組成物。組成物がdリモネン、pシメン、αピネン、タイム油、チモール、ゲラニオール、レモングラス油、ブラックシードオイル、ライラックフラワー油、鉱油、及びフェニルアセトアルデヒドの中から選択される少なくとも2種の油を含有してなるものである請求項3に記載の組成物。ブラックシードオイル、カンフェン、dカルボン、lカルボン、18シネオール、クエン酸イソプロピル、レモングラス油、ライラックフラワー油、ライム油、アントラニル酸リナリル、クエン酸メチル、ジヒドロジャスモン酸メチル、ミルセン、ペリリルアルコール、フェニルアセトアルデヒド、αピネン、βピネン、ピペロニル、ピペロニルアミン、キニーネ、サビネン、αテルピネン、テルピネン900、γテルピネオール、2tertブチルpキノン、及びαツヨンの中から選択される少なくとも2種類の油を含有してなる昆虫防除用組成物。さらに少なくとも1種の不揮発性油を含有してなる請求項45に記載の組成物。少なくとも1種の不揮発性油が、ヒマシ油、トウモロコシ油、クミン油、鉱油、オリーブ油、落花生油、サフラワー油、ゴマ油、及びダイズ油の中から選択される油からなるものである請求項46に記載の組成物。選択される油がライラックフラワー油及びクミン油からなるものである請求項47に記載の組成物。ブラックシードオイル及びライラックフラワー油の中から選択される少なくとも1種の油を含有してなる昆虫防除用組成物。さらに少なくとも1種の植物精油を含有してなる請求項49に記載の組成物。少なくとも1種の植物精油が、tアネトール、ブラックシードオイル、カンフェン、カルバクロール、dカルボン、lカルボン、18シネオール、pシメン、フタル酸ジエチル、オイゲノール、ゲラニオール、クエン酸イソプロピル、レモングラス油、ライラックフラワー油、ライム油、dリモネン、アントラニル酸リナリル、リナロール、リンデノール、クエン酸メチル、ジヒドロジャスモン酸メチル、ミルセン、ペリリルアルコール、フェニルアセトアルデヒド、αピネン、βピネン、ピペロナール、ピペロニル、酢酸ピペロニル、ピペロニルアルコール、ピペロニルアミン、キニーネ、サビネン、αテルピネン、テルピネン900、αテルピネオール、γテルピネオール、2tertブチルpキノン、αツヨン、タイム油、チモール、ヒマシ油、トウモロコシ油、クミン油、鉱油、オリーブ油、落花生油、サフラワー油、ゴマ油、及びダイズ油の中から選択される油からなるものである請求項50に記載の組成物。選択される油がライラックフラワー油及びクミン油からなるものである請求項51に記載の組成物。選択される油がライラックフラワー油;ゲラニオール、及びタイム油からなるものである請求項51に記載の組成物。選択される油がライラックフラワー油;ゲラニオール、タイム油、及びクミン油からなるものである請求項53に記載の組成物。少なくとも1種の植物精油と昆虫防除剤を含有してなる昆虫防除用組成物であって、前記昆虫防除剤の最終濃度が、前記昆虫防除剤を単独で使用する場合に昆虫防除活性を示すのに必要な濃度よりも低いものである昆虫防除用組成物。少なくとも1種の植物精油が、tアネトール、ブラックシードオイル、カンフェン、カルバクロール、dカルボン、lカルボン、18シネオール、pシメン、フタル酸ジエチル、オイゲノール、ゲラニオール、クエン酸イソプロピル、レモングラス油、ライラックフラワー油、ライム油、dリモネン、アントラニル酸リナリル、リナロール、リンデノール、クエン酸メチル、ジヒドロジャスモン酸メチル、ミルセン、ペリリルアルコール、フェニルアセトアルデヒド、αピネン、βピネン、ピペロナール、ピペロニル、酢酸ピペロニル、ピペロニルアルコール、ピペロニルアミン、キニーネ、サビネン、αテルピネン、テルピネン900、αテルピネオール、γテルピネオール、2tertブチルpキノン、αツヨン、タイム油、及びチモールの中から選択される少なくとも1種の油からなるものである請求項55に記載の組成物。昆虫防除剤がDEETである請求項56に記載の組成物。昆虫防除剤がDEETである請求項55に記載の組成物。DBETの最終濃度が少なくとも10と低いものである請求項58に記載の組成物。DBETの最終濃度が少なくとも5と低いものである請求項59に記載の組成物。さらに不揮発性油を含有してなる請求項57に記載の組成物。不揮発性油が、ヒマシ油、トウモロコシ油、クミン油、鉱油、オリーブ油、落花生油、サフラワー油、ゴマ油、及びダイズ油の中から選択される油からなるものである請求項61に記載の組成物。選択される油がDEET、ライラックフラワー油及びクミン油からなるものである請求項62に記載の組成物。選択される油がDEET約10重量、ライラックフラワー油約45重量及びクミン油約45重量からなるものである請求項63に記載の組成物。選択される油がDEET、dリモネン、タイム油、ゲラニオール、αピネン、及びpシメンからなるものである請求項57に記載の組成物。選択される油がDEET約10重量、dリモネン約18重量、タイム油約18重量、ゲラニオール約20重量、αピネン約20重量、及びpシメン約18重量からなるものである請求項65に記載の組成物。tアネトール、ブラックシードオイル、カンフェン、カルバクロール、dカルボン、lカルボン、18シネオール、pシメン、フタル酸ジエチル、オイゲノール、ゲラニオール、クエン酸イソプロピル、レモングラス油、ライラックフラワー油、ライム油、dリモネン、アントラニル酸リナリル、リナロール、リンデノール、クエン酸メチル、ジヒドロジャスモン酸メチル、ミルセン、ペリリルアルコール、フェニルアセトアルデヒド、αピネン、βピネン、ピペロナール、ピペロニル、酢酸ピペロニル、ピペロニルアルコール、ピペロニルアミン、キニーネ、サビネン、αテルピネン、テルピネン900、αテルピネオール、γテルピネオール、2tertブチルpキノン、αツヨン、タイム油、及びチモールの中から選択される少なくとも2種類の油を含有してなる組成物を準備し;該組成物を昆虫に忌避効果を生じるのに十分な濃度で暴露させることからなる昆虫の防除方法。選択される油がライラックフラワー油;ゲラニオール、及びタイム油からなるものである請求項67に記載の方法。選択される油がαツヨン、αピネン、サビネン、βピネン、pシメン及びリモネンからなるものである請求項67に記載の方法。選択される油がフタル酸ジエチル、αテルピネオール、ピペロナール、リナロール、γテルピネオール、ジヒドロジャスモン酸メチル、クエン酸メチル及びクエン酸イソプロピルからなるものである請求項67に記載の方法。ブラックシードオイル及びライラックフラワー油の中から選択される少なくとも1種の油を含有してなる組成物を準備し;該組成物を昆虫に忌避効果を生じるのに十分な濃度で暴露させることからなる昆虫の防除方法。準備される組成物がさらに少なくとも1種の追加の植物精油を含有してなるものである請求項71に記載の方法。請求項52に記載の組成物を準備し;該組成物を昆虫に忌避効果を生じるのに十分な濃度で暴露させることからなる昆虫の防除方法。準備される組成物の昆虫防除剤がDEETである請求項73に記載の方法。tアネトール、ブラックシードオイル、カンフェン、カルバクロール、dカルボン、lカルボン、18シネオール、pシメン、フタル酸ジエチル、オイゲノール、ゲラニオール、クエン酸イソプロピル、レモングラス油、ライラックフラワー油、ライム油、dリモネン、アントラニル酸リナリル、リナロール、リンデノール、クエン酸メチル、ジヒドロジャスモン酸メチル、ミルセン、ペリリルアルコール、フェニルアセトアルデヒド、αピネン、βピネン、ピペロナール、ピペロニル、酢酸ピペロニル、ピペロニルアルコール、ピペロニルアミン、キニーネ、サビネン、αテルピネン、テルピネン900、αテルピネオール、γテルピネオール、2tertブチルpキノン、αツヨン、タイム油、及びチモールの中から選択される少なくとも2種類の油を含有してなる組成物を準備し;該組成物を昆虫に殺虫効果を生じるのに十分な濃度で暴露させることからなる昆虫の防除方法。少なくとも1種の植物精油と昆虫防除剤但し、前記昆虫防除剤の最終濃度は、該昆虫防除剤を単独で使用した場合に昆虫防除活性を示すのに必要とされる濃度よりも低いとを含有してなる組成物を準備し;且つ忌避効果を生じるのに十分な濃度の前記組成物に昆虫を暴露することからなる昆虫の防除方法。準備される組成物の昆虫防除剤がDEETである請求項76に記載の方法。少なくとも1種の植物精油が、tアネトール、ブラックシードオイル、カンフェン、カルバクロール、dカルボン、lカルボン、18シネオール、pシメン、フタル酸ジエチル、オイゲノール、ゲラニオール、クエン酸イソプロピル、レモングラス油、ライラックフラワー油、ライム油、dリモネン、アントラニル酸リナリル、リナロール、リンデノール、クエン酸メチル、ジヒドロジャスモン酸メチル、ミルセン、ペリリルアルコール、フェニルアセトアルデヒド、αピネン、βピネン、ピペロナール、ピペロニル、酢酸ピペロニル、ピペロニルアルコール、ピペロニルアミン、キニーネ、サビネン、αテルピネン、テルピネン900、αテルピネオール、γテルピネオール、2tertブチルpキノン、αツヨン、タイム油、及びチモールの中から選択される油からなるものである請求項77に記載の方法。昆虫防除活性について組成物を選別する方法であって、チラミン受容体、Or83b嗅覚受容体、及びOr43a嗅覚受容体の中から選択される受容体を発現する昆虫細胞を準備し;前記細胞に前記組成物を加え;前記受容体に対する前記組成物の結合親和性を測定し;且つ前記受容体に対して親和性を有する組成物を選択することからなる昆虫防除活性について組成物を選別する方法。昆虫防除活性について組成物を選別する方法であって、チラミン受容体、Or83b嗅覚受容体、及びOr43a嗅覚受容体の中から選択される受容体を発現する昆虫細胞を準備し;前記細胞に前記組成物を加え;前記細胞から細胞内cAMP又はCa2を抽出し;細胞内のcAMP又はCa2濃度を測定し;前記組成物で処理した細胞の細胞内cAMP又はCa2濃度を、未処理細胞の細胞内cAMP又はCa2濃度と比較し;且つ組成物であってそれを用いた処理が細胞内cAMP又はCa2濃又はこの両方の変化を生じる組成物を選択することからなる昆虫防除活性について組成物を選別する方法。チラミン受容体、Or83b嗅覚受容体、及びOr43a嗅覚受容体の中から選択される受容体を発現する昆虫細胞を準備し;前記細胞に前記組成物を加え;前記受容体に対する前記組成物の結合親和性を測定し;且つ前記受容体に対して親和性を有する組成物を選択することからなる方法によって作成されるレポート。チラミン受容体、Or83b嗅覚受容体、及びOr43a嗅覚受容体の中から選択される受容体を発現する昆虫細胞を準備し;前記細胞に前記組成物を加え;前記細胞から細胞内cAMP又はCa2を抽出し;細胞内のcAMP又はCa2濃度を測定し;前記組成物で処理した細胞の細胞内cAMP又はCa2濃度を、未処理細胞の細胞内cAMP又はCa2濃度と比較し;且つ組成物であってそれを用いた処理が細胞内cAMP又はCa2濃又はこの両方の変化を生じる組成物を選択することからなる方法によって作成されるレポート。チラミン受容体について図31A及び31Bに記載の核酸配列を含有するショウジョウバエのシュナイダー株。Or43a嗅覚受容体について図32A及び32Bに記載の核酸配列を含有するショウジョウバエのシュナイダー株。Or83b嗅覚受容体について図33A及び33Bに記載の核酸配列を含有するショウジョウバエのシュナイダー株。本発明を、以下の具体的実施例であって限定されない実施例によりさらに例証する。以下の実施例は、実施例に示した及び含まれる数値、結果及び/又はデータにもかかわらず予言的なものである。実施例1~5は、チラミン受容体を発現する細胞系の調製及びこの細胞系を使用する本発明の組成物の選別に関する。実施例6~11は、Or83b受容体を発現する細胞系の調製、Or43a受容体を発現する細胞系の調製、及びこれらの細胞系を使用する前記組成物の選別に関する。実施例12~34は、本発明の組成物の忌避効果及び/又は殺虫効果の測定に関する。実施例1チラミン受容体を安定的に移入したシュナイダー細胞系の調製A.キイロショウジョウバエのチラミン受容体のPCR増幅及びサブクローニングバークレーショウジョウバエゲノムプロジェクトを通じて得られるキイロショウジョウバエの頭部のcDNAファージライブラリーGHから、チラミン受容体を増幅させた。TyrRの核酸配列及びペプチド配列を、図31A及び31Bに示す。このライブラリーから液体培養溶菌液を使用して、ファージDNAを精製した。手短に言えば、ショウジョウバエのチラミン受容体の読み取り枠を増幅させるのに使用するオリゴヌクレオチドは、5 ́オリゴヌクレオチド:及び3 ́オリゴヌクレオチド:からなる。大文字はチラミン受容体配列に一致する。付加されたKozak配列GrosmaitreXJacquinJolyE2001MamestrabrassicaeputativeoctopaminereceptormRNAcompletecdsNCBIdirectsubmissionAccessionAF43878は、下線を引いたヌクレオチドによって示される。5 ́オリゴヌクレオチドはまた、EcoRI部位を含有し、また3 ́オリゴヌクレオチドXbaI部位も含有する。PCRを、Ventポリメラーゼを使用し、次の条件を用いて行った:約95°C、約5分を約1サイクル;約95°C、約30秒;及び約70°C、約90秒間を約40サイクル;及び約70°C、約10分間を約1サイクル。PCR生成物をEcoRI及びXbaIで消化し、pCDNA3中にサブクローン化し、そして自動DNA配列決定装置で両方の鎖を配列決定した。この読み取り枠をタンパク質に翻訳すると、公表されたチラミン受容体配列と正確に一致することが認められた。ショウジョウバエのシュナイダー細胞中で発現させるために、TyrRORFをpCDNA3から切り取り、EcoRI及びXbaI制限部位を使用してpAC51V5HispAc5に挿入した。トランスフェクションについては、InvitrogenDrosophiliaExpressionSystemマニュアルに記載のリン酸カルシウムDNA共沈プロトコールを使用して、ショウジョウバエのシュナイダー細胞に、pAc5TyrRORFを安定的に移入した。共沈プロトコールは、安定したトランスフェクションのために抗生物質抵抗性プラスミドを使用した以外は、過渡的トランスフェクション又は安定したトランスフェクションについて同じである。安定的に移入された細胞の少なくとも約10個のクローンを選択し、別々に増殖させた。前記受容体を発現する安定なクローンを、3Hチラミンを使用して全細胞結合/取り込みによって選択した。このアッセイについては、細胞を洗浄し、昆虫食塩水170mMNaCl、6mMKCl、2mMNaHCO3、17mMグルコース、6mMNaH2PO4、2mMCaCl2及び4mMMgCl2に回収した。昆虫食塩水約1mL中の約3百万個の細胞を、4nM3Hチラミンと共に約23°Cで約5分間インキュベートした。細胞を約30秒間遠心分離し、得られた結合溶液を吸引した。得られた細胞ペレットを、昆虫食塩水約500μlで洗浄し、細胞を再懸濁し、そしてシンチレーション液に移した。非特異的結合を、反応において約50μM非標識チラミンを含有させることによって測定した。結合は、液体シンチレーションβカウンターを使用して放射能をカウントすることによって定量した。B.高濃度の機能的に活性なチラミン受容体タンパク質を有するクローンの選別チラミン受容体の結合/取り込みを行い、移入されたクローンの中のどのクローンが高濃度の機能的に活性なチラミン受容体タンパク質を有するかについて調べた。チラミン受容体について約10個のクローン系が存在し及び対照について約2個のpAcが存在する。約50pM非標識チラミンを特異競合剤として存在させるか又は存在させずに、3Hチラミンをトレーサーとして使用する。このアッセイについては、細胞をプレート中で増殖させ、カウントする細胞用の培地約3ml中に回収し、そして細胞の個数を細胞約3×106個mlに調節した。約2個のpAcBクローンを同時に対照として使用した。反応当たりにつき約1mlの細胞懸濁液を使用した。特異結合に基づいて、約3個のクローンが高濃度の活性チラミン受容体タンパク質を発現した。最も特異性の高いチラミン受容体結合を有するクローンを、別の研究用に選択した。選択したクローンを増殖させ、液体窒素中で保存した。選択したクローンのアリコートを、全細胞結合及び速度論研究及び選別研究用の形質膜調製用に増殖させた。対照pAcBは、チラミン受容体について特異的結合を実証しなかった。C.チラミン受容体の相互作用について組成物を選別するためのチラミン受容体を移入したシュナイダー細胞の効果チラミン受容体を移入した細胞を、マルチウエルプレートの各ウエルで培養した。細胞を塗布した約24時間後に、培地を回収し、約1mlの昆虫食塩水と交換した。種々の濃度の3Hチラミンを、約10μMの非標識チラミンと共に及び非標識チラミン無しで加え、室温でインキュベートした。約20分のインキュベーションの後に、反応を食塩水の迅速吸引によって停止させ、約2mlの昆虫食塩水で少なくとも1回洗浄した。細胞を、03MNaOH約300μlにRTで約20分間可溶化させた。溶解した細胞を、約4mlの液体シンチレーション溶液に移し、約30秒間激しく攪拌し、その後に液体シンチレーションβカウンターを使用して放射能をカウントした。図1に関して、受容体特異的結合データは、細胞1×106個当たりのfmol特異結合として表し、3Hチラミン濃度の関数として測定した。特異結合の値は、約10μMの非標識チラミンの不存在下の値と存在下の値の間の差として算出した。図1に示すように、最大特異結合が約5nM3Hチラミンで生じた。非移入細胞は、約100μMほどの高い濃度ではチラミンに反応しなかった。pAcBTyrRを安定的に移入した細胞におけるチラミン受容体の速度論を研究するために、前記移入細胞から粗膜画分を調製し、平衡解離定数、最大結合能、平衡阻害剤解離定数及びEC50を算出するのに使用した。受容体結合活性について膜タンパク質の最適濃度を調べるための予備研究を行った。この研究において、種々の濃度のタンパク質を、約1mlの結合緩衝液中でインキュベートした。約5nMの3Hチラミンを、約10μM非標識チラミンと共に及び非標識チラミン無しで加えることによって、反応を開始させた。室温で約1時間インキュベートした後に、予め約03ポリエチレンイミンに浸しておいたGFCフィルターに通して濾過することによって反応を停止させた。このフィルターを約4mlの氷冷Tris緩衝液で1回洗浄し、風乾し、その後にLSCを使用して残留放射能を測定した。結合データを、曲線の当てはめGraphPadsoftware、Prismにより分析した。データは、チラミン受容体特異結合において約10、20、30及び50μgタンパク質/反応の間で差がないことを実証している。従って、約10μgタンパク質反応を使用した。TyrRを発現する膜のチラミン受容体についてBmax値及びKd値を測定するために、飽和結合実験を行った。手短に言えば、約10μgのタンパク質を、一連の濃度約02~20nMの3Hチラミンと共にインキュベートした。結合データを、曲線の当てはめにより分析し、チラミン受容体に対するチラミン結合のKdを測定した。TyrRに対する数種のリガンドの親和性を調べるために、数種の化合物の濃度を高めながら、約2nM3Hチラミンの結合を阻害する能力について試験した。飽和アッセイ及び阻害アッセイについては、全結合及び非特異結合を、約10μMの非標識チラミンの不存在下及び存在下でそれぞれで測定した。受容体結合反応物を、制限された光の中で、室温で約1時間インキュベートした。反応は、予め約03ポリエチレンイミンに浸しておいたGFCフィルターで濾過することによって反応を停止させた。このフィルターを約4mlの氷冷Tris緩衝液で1回洗浄し、風乾し、その後にLSCを使用して残留放射能を測定した。結合データを、曲線の当てはめにより分析した。図2に関して、チラミン受容体を発現するシュナイダー細胞から調製した膜に対する3Hチラミンの飽和結合曲線を描くと、3Hチラミンは、pAcBTyrRが安定的に移入された細胞中でチラミン受容体に対して高い親和性を有し、Kdは約1257nMと測定され且つBmaxは約0679pmolmgタンパク質と測定された。図3に関して、種々の濃度の非標識チラミンの存在下及び不存在下でチラミン受容体を発現するシュナイダー細胞から調製した膜に対する3Hチラミンの阻害結合曲線を描くと、チラミン受容体を発現するシュナイダー細胞中のチラミン受容体に対するチラミンのEC50及びKiは、それぞれ約0331μM及び0127μMであった。チラミン受容体の薬理学的プロフィールを調べるために、多数の推定されるショウジョウバエ神経伝達物質についてチラミン受容体を発現する膜から3Hチラミン結合を置換する能力を試験した。図4に関して、種々の濃度の非標識リガンド例えば、チラミン、オクトパミン、ドーパミン及びセロトニンの存在下及び不存在下でチラミン受容体を発現するシュナイダー細胞から調製した膜に対する3Hチラミンの阻害結合曲線を描くと、チラミンは、ショウジョウバエTyrRについて最も高い親和性約0127μMのKi、約0305μMのEC50を示した、オクトパミン、ドーパミン及びセロトニンは、置換3Hチラミン結合の置換においてチラミンよりも効果が劣った。表Aに関して、リガンドのKi及びEC50を挙げると、有効性の順序は、次の通り:チラミン>オクトパミン>ドーパミンセロトニンであり、安定的に移入されたシュナイダー細胞が機能的に活性なチラミン受容体を発現している可能性を示す。このように、チラミン受容体を発現するシュナイダー細胞は、チラミン受容体と相互作用する組成物の研究及び選別用モデルとして有効である。実施例2チラミン受容体を発現する細胞の処理及び細胞内cAMPに対する組成物の効果細胞をシャーレで増殖させ、培地を処理前日に変えた。細胞が約95融合した際に、培地を吸引し、細胞を約27°Cの昆虫食塩水170mMNaCl、60mMKCl、20mMNaHCO3、170mMグルコース、60mMNaH2PO4、20mMCaCl2、40mMMgCl2;pH70約5mLで1回洗浄した。昆虫食塩水約20mLを加え、細胞を穏やかに擦り取ることによって回収した。細胞のアリコートを血球計でカウントし、次いで細胞を約5分間、約1000RPMで遠心分離した。細胞を再懸濁してmL当たり細胞約3×106個を得た。DBMXを約200μMまで加えた。次いで、細胞懸濁物約1mLを処理用に分取した。フォルスコリン、チラミン又は種々の候補組成物を加え、細胞を約27°Cで約10分間インキュベートした。処理した細胞を、約13000gで約10秒間遠心分離した。溶液を吸引し、約-20°Cの70エタノール約1mLを加えた。細胞のペレットをかき混ぜることによって崩壊させ、試料を約-20°Cで一夜置いた。エタノール抽出を行った後に、細胞砕片を約13000gで約5分間遠心分離することによってペレット化した。上清を管に移し、rotaryspeedvac中で凍結乾燥して乾固し、得られた抽出物を約100μLのTEに再懸濁し、cAMPアッセイに使用した。cAMPアッセイは、cAMP結合タンパク質に対する内因性cAMPと3HcAMPとの間の競合結合に基づく。3HcAMPBiotrak装置を、製造業者の使用説明書により、このアッセイに使用した。手短に言えば、細胞抽出物約50μLを、約50μLの3HcAMP及び約100μLのcAMP結合タンパク質と共に、氷浴中で約2~4時間インキュベートした。次いで、木炭を加え、溶液を約4°Cで約3分間、遠心分離した。反応混合物約200μLを取り出し、3HcAMPの量を、シンチレーションでカウントすることによって調べた。細胞由来の内因性cAMPの量を、反応当たり約0~16pmolの範囲の冷cAMPを用いて、標準曲線を使用して算出した。実施例3チラミン受容体を発現する細胞の処理及び細胞内Ca2に対する組成物の効果細胞内カルシウムイオン濃度を、蛍光指示薬fura2のアセトキシメチルエステルを使用することによって測定した。この研究では、チラミン受容体を発現する細胞を標準条件下で増殖させた。細胞懸濁物をアッセイ緩衝液中で調製し、細胞の個数をml当たり約2×106個に調整した。手短に言えば、約10mlの細胞懸濁物を、約5μMのFura2AMと共に約28°Cで約30分間インキュベートした。インキュベーション後に、細胞を約3700rpmで室温で約10秒間遠心分離することによってペッレット化し、次いで約15mlのアッセイ緩衝液に再懸濁した。Ca2i変化を、試験化学物質の存在下及び不存在下で分光蛍光光度計で分析した。励起波長は、約340nm及び約380mnであった。蛍光の強さを、約510mnの発光波長で監視した。蛍光アーチファクトartifactsの吸光度は、使用した化合物のいずれについても認められなかった。約340380nmの比を算出し、時間の関数としてプロットした。実施例4チラミン受容体を発現する細胞におけるチラミン受容体結合活性に対するライラックフラワー油及びブラックシードオイルの効果特定の油、すなわちライラックフラワー油及びブラックシードオイルが相互作用し、チラミン受容体の機能的発現を調節するかどうかを調べるために、安定的に移入されたシュナイダー細胞及び及び非移入シュナイダー細胞由来の膜を、3Hチラミン結合について分析した。受容体部位での3Hチラミンとの相互作用については、前記と同じ結合プロトコールを使用した。LFO及びBSOの用量応答を行い、チラミン受容体を発現するシュナイダー細胞から調製した膜に対する3Hチラミンの阻害結合に対するLFO及びBSOの効果を調べた。図5に関して、種々の濃度のLFO及びBSOの存在下及び不存在下でのチラミン受容体を発現するシュナイダー細胞から調製した膜に対する3Hチラミンの阻害結合を描くと、チラミン受容体に対する3Hチラミンの阻害が、LFO及びBSOによる処理に用量に依存して応答して実証された。LFO及びBSOのEC50値は、それぞれほぼ10μgml及び20pgmlの付近にあった。図6について、LPO又はBSOの存在下及び不存在下で、あるいは約1μM及び10μMの非標識チラミンと組み合わせて、チラミン受容体を発現するシュナイダー細胞から調製した膜に対する3Hチラミンの阻害結合を描くと、LFOは、それ自体でチラミン受容体に対する3Hチラミンの結合を阻害した。この効果は、約10μMの非標識チラミンの効果に対してはあいまいであるequivocal。また、LFOは、非標識チラミンを約1μMで使用した場合にのみ3Hチラミン結合に対する非標識チラミンの有効性を高める。これに対して、BSOは、3Hチラミン結合に対してLFOよりも効果がなかった。しかし、BSOは、非標識チラミンの濃度に関係なく、3Hチラミン結合に対する非標識チラミンの有効性を著しく増大する。上記2種類の油は、非移入シュナイダー細胞において3Hチラミン結合に対して効果を示さなかった。このように、LFO及びBSOはチラミン受容体と異なって相互作用すると思われる。理論又はメカニズムに縛られることを望まないが、LFO及びチラミンは同じ結合部位で競合し、これに対してBSOは内因性リガンドよりも受容体の種々の部位で作用すると思われる。ある種の別の油、例えば、本出願明細書に最初に明示した油もまた、チラミン受容体と相互作用する。実施例5チラミン受容体を発現する細胞における細胞内cAMPに対するライラックフラワー油及びブラックシードオイルの効果チラミン受容体の試験化学物質依存結合を調べるために、pAcBTyrRをシュナイダー細胞中で安定的に発現させた。移入及び非移入細胞を、フォルスコリンの存在下及び不存在下で、チラミン、LFO及びBSOで処理した。cAMP産生を前記のように3HcAMPアッセイキットを使用して測定した。この細胞モデルでのcAMPカスケードが機能的に活性であることを確実にするために、フォルスコリンcAMP誘発剤を標準薬として使用した。図7~9チラミン及びフォルスコリンの存在下及び不存在下で、LFO及びBSOで処理した後のチラミン受容体を発現するシュナイダー細胞中のcAMP量のチラミン依存変化を表すに示すように、溶媒のみで処理した細胞中のcAMPの基礎量と比べて、フォルスコリン処理に応答して移入細胞中でのみcAMP量の約19倍の増大があった。一方、チラミンは、cAMP産生においてわずかな低下を誘導した。しかし、チラミンは、チラミン受容体を発現する細胞中のフォルスコリンで刺激されたcAMP量を著しくアンタゴナイズし、チラミン受容体が、図7に示すようにチラミンの存在下でGαi/Oに結合することを示唆する。cAMP量の約34及び25の低下が、移入細胞においてのみLFO及びBSOそれぞれの処理に応じて認められた。チラミンは、チラミン受容体移入細胞中のcAMP産生に対するLFOの効果を高めるが、BSO及びチラミンの同時処理は、図8に示すように、BSOそれ自体の効果を越えるcAMP量の変化を誘導しなかった。チラミン受容体を発現するシュナイダー細胞中のLFO及びBSOで低下させたcAMP量は、図9に示すように、フォルスコリンの存在下で減少した。ある種の別の植物精油、例えば、本出願明細書に明示し植物精油もまた、チラミン受容体を発現する細胞において細胞内cAMPの量の変化をもたらす。実施例6嗅覚受容体を安定的に移入されたシュナイダー細胞系の調製A.キロショウジョウバエ嗅覚受容体Or83b及びOr43aのRTPCR増幅及びサブクローニング全RNAを、野生型キイロショウジョウバエの頭部及び触覚からTrizol試薬を使用して調製した。これらを、モーター駆動テフロン乳棒及びガラスホモジナイザーを使用してTrizol中でホモジナイズした。次いで、RNAを、製造業者の取扱説明書に従って調製し、沈降によるプロテオグリカン及び多糖類の除去を含む。全RNAを、プライマーとしてオリゴdTを使用し且つMuLV逆転写酵素を使用して逆転写した。読み取り枠をPC増幅するために、下記のオリゴヌクレオチドを使用した:Or83bセンスOr83bアンチセンスOr43aセンス及びOr43aアンチセンス大文字は、Or83b及びOr43a受容体の配列と一致する。センスオリゴヌクレオチドは、NotI部位を含有し、またアンチセンスオリゴヌクレオチドは、SacII部位を含有する。両方の制限部位は、下線を付したヌクレオチドにより示す。アンチセンスオリゴヌクレオチドは、停止コドンを含んでおらず、従ってpAC51プラスミド由来のV5エピトープは、翻訳されたタンパク質と共にフレーム内にあるであろう。Or83bのPCR増幅については、Ventポリメラーゼを、次の条件と共に使用した:約95°C、約5分で1サイクル;約95°C、約30秒;及び約70°C、約90秒で約40サイクル;及び約70°C、約10分で1サイクル。Or43aのPCR増幅については、FailsafePCRプレミックス選別キットを次の条件と共に使用した:約95°C、約5分を約1サイクル;約95°C、約30秒;約60°C、約30秒及び約70°C、約90秒を約50サイクル;及び約70°C、約10分を約1サイクル。Failsafeプレミックス緩衝液Fは、正確な大きさの生成物を生成する。PCR生成物を、SacII及びNotIで消化し、ゲル精製し、pAC51V5HisBに結合した。挿入片を、自動蛍光配列決定装置で両方の鎖について配列決定した。Or83b読み取り枠及びOr43a読み取り枠の両方は、PubMed上の配列情報及びWebサイト上のゲノム配列において見出された配列情報と比べると、同じタンパク質をコードした。Or43aの核酸配列及びペプチド配列を、図32A及び32Bに示す。Or83bの核酸配列及びペプチド配列を、図33A及び33Bに示す。トランスフェクションについて、ショウジョウバエのシュナイダー細胞に、前記のInvitrogenDrosophilaExpressionSystemマニュアルに記載のリン酸カルシウム-DNA共沈プロトコールを使用して、pAc5Or83bORF又はpAc5Or43aORFを安定的に移入した。Or83b又はOr43aのいずれかを安定的に移入された細胞の少なくとも約10個のクローンを選択し、別々に増殖させた。安定なクローンを、これらが対応するmRNAを発現するか否かを試験するために、RTPCR法を使用して分析した。製造業者の取り扱い説明書に従ってTrizolを使用して、細胞からRNAを調製した。全RNAを、MuLV逆転写酵素を用いて逆転写した。Ventポリメラーゼ並びに次のプライマー:Or83bセンス及びOr83bアンチセンス;Or43aセンス及びOr43aアンチセンスを使用してPCRを行った。PCR生成物をアガロースゲル電気泳動により分析し、RTPCRに使用した対照シュナイダー細胞RNAと比較した。r83bmRNA又はOr43amRNAを高度に発現するクローンを、別の研究で使用して、タンパク質発現、及びチラミン及びcある種の植物精油による処理に応じるシグナル伝達を扱った。RTPCRを使用して、どのクローンがOr83b及びOr43a遺伝子を発現したかを調べた。アガロースゲル分析は、約10個のクローンのうち約4個のクローンが約146kbの正確な大きさの生成物を生成することを示した。同様に、Or43aについて、約2個のクローンが約11kbの正確な大きさの生成物を生成した。これらの生成物のいずれも、対照シュナイダー細胞についてPCRを行った場合には得られなかった。mRNAを発現するクローンを、前記受容体と共にさらなる研究用に選択した。B.Or83b及びOr43a受容体相互作用について組成物を選別するためのOr83b受容体又はOr43a受容体を移入したシュナイダー細胞系の効果Or83b受容体及びOr43a受容体が、チラミンについて特異的結合部位を含有しているか否かを扱うために、Or83b受容体又はOr43a受容体を発現する膜を、前記のようにしていずれかの受容体を発現する細胞から調製し、3Hチラミンとの競合結合に使用した。結合アッセイプロトコールは、まさに前記のようにTyrRを発現する細胞について説明したものである。図10に示すように、約20μMの非標識チラミンの存在下及び不存在下で、Or83b受容体を発現するシュナイダー細胞から調製した膜に対する3Hチラミンの飽和結合曲線を描き、及び図11に示すように、Or43a受容体を発現する細胞について上記と同じ情報を描くと、3HチラミンはOr83b受容体及びOr43a受容体に特異的に結合した。表Bに示すように、チラミンは、Or83b受容体に結合し、約9690nMのKd及び約4908pmolmgタンパク質のBmaxを有し、Or43aについては、対応する値はKdが約13530nM及びBmaxが約1122pmolmgタンパク質であった。実施例7嗅覚受容体を発現する細胞でのcAMPの産生この細胞モデルでのcAMPカスケードが機能的に活性であることを裏付けるために、フォルスコリンcAMP誘発剤を標準薬として使用した。サイクリックAMPの量を、実施例2に記載のcAMPアッセイを使用して測定した。図12に示すように、Or83b受容体を発現する細胞中のcAMP量のフォルスコリン依存変化を描くと、約10μMフォルスコリンを用いて室温で約10分間処理した細胞中の基礎cAMP量から約13倍の増大がある。Or43a受容体を発現する細胞を用いて、同様の結果が得られた。このように、嗅覚受容体を発現する細胞は機能的に活性なcAMPカスケードを有する。実施例8嗅覚受容体を発現する細胞中でのCa2の細胞内動員細胞内Ca2濃度を、実施例3に記載の方法で測定した。カルシウム動員は、Or83b受容体又はOr43a受容体を発現する細胞内でイオノマイシンCa2誘発剤及びチラミンによる処理に応じて生じる。具体的には、図13及び14に関して、図では340nm及び380nmによる励起から測定された蛍光比が、Or83b又はOr43aを発現する細胞に約2μMのイオノマイシンを加えた場合の細胞内カルシウム濃度と相関性があり、細胞内カルシウムの顕著な増加が検出された。カルシウムの約38倍及び7倍の増加が、Or83b及びOr43aそれぞれを発現する細胞でイオノマイシンによる処理に応じて認められた。図15に関して、約10μMでのチラミンの試験はまた、Or83b及びOr43aそれぞれをを発現する細胞で細胞内カルシウムの約118倍の増加及び35倍の増加を誘発することができる。総合すると、薬理学的分析データは、Or83b受容体遺伝子又はOr43a受容体遺伝子が移入されたこれらの細胞モデルが機能性タンパク質受容体を発現していることを裏付ける。実施例9嗅覚受容体の結合活性に対する種々の植物精油の効果及び前記受容体に対して下流のシグナル伝達経路前記の嗅覚受容体の一つを発現する細胞を使用して、植物精油とこれらの受容体との相互作用及びそれぞれの受容体の下流のシグナル伝達カスケードを調べた。結合活性については、膜をそれぞれの細胞モデルから調製し、植物精油と受容体結合部位との相互作用を調べるのに使用した。図16に関して、下記の油が嗅覚受容体と相互作用する:ライラックフラワー油、フタル酸ジエチル、αテルピネオール、及びピペロナール。同様に、図17及び18に関して、下記の油が嗅覚受容体と相互作用する:ブラックシードオイル、αピネン、キノン、p-シメン、サビネン、αツヨン及びdリモネン。同様に、図19~21に関して、下記の油が嗅覚受容体と相互作用する:ゲラニオール、アントラニル酸リナリル、フェニルアセトアルデヒド、リナロール、αテルピネオール、tアネトール、テルピネン900、リンデノール、オイゲノール、タイム油、カルバクロール、チモール、ピペロナール、ピペロニルアルコール、酢酸ピペロニル、及びピペロニルアミン。その他のある種の油、例えば本出願明細書に明示した油類もまた、嗅覚受容体と相互作用する。実施例10Or43a受容体を発現する細胞でのCa2の細胞内動員に対する種々の植物精油の効果細胞内カルシウム動員に対する種々の植物精油の効果を調べるために、各細胞モデルから得た無傷細胞を前記のアッセイに使用した。細胞内Ca2濃度の変化を、処理前及び処理の約150秒後の340380蛍光比の間の差に基づいて算出した。図22に示すように、対照細胞内でCa2の動員を誘発するイオノマイシン及びチラミンによる処理は、Or43a受容体を発現する細胞内で細胞内Ca2濃度をごくわずかしか増加させなかった。図22~28に関し、下記の油は、Or43a受容体を発現する細胞内でカルシウム動員をもたらした:アントラニル酸リナリル、リナロール、ペリリルアルコール、tアネトール、ゲラニオール、フェニルアセトアルデヒド、オイゲノール、ピペロニルアルコール、酢酸ピペロニル、ピペロニルアミン、αテルピネオール、リンデノール、テルピネン900、タイム油、チモール、カルバクロール、LFO、BSO、αピネン、pシメン、dリモネン、サビネン、キニーネ、lカルボン、dカルボン及びαツヨン。最後に、図24に示すように、ピペロナールの処理は、Or43a受容体を発現する細胞内で細胞内Ca2濃度を低下させた。その他のある種の植物精油、例えば本出願明細書に明示した植物精油による処理もまた、Or43a受容体を発現する細胞内で細胞内Ca2濃度の変化を生じた。また、その他のある種の植物精油、例えば本出願明細書に明示した植物精油による処理は、Or83b受容体を発現する細胞内で細胞内Ca2濃度の変化を生じた。実施例11嗅覚受容体を発現する細胞内のcAM産生に対する種々の植物精油の効果前記の嗅覚受容体の一つを発現する細胞での細胞内cAMP産生及びcAMPのチラミ依存変化に対する種々の植物精油の効果を調べるために、各細胞モデルから得た細胞を、チラミン及びフォルスコリンの存在下及び不存在下で、LPO及びBSOで処理し、その後に細胞内cAMPを実施例に記載のcAMPアッセイを使用して定量した。図29及び30に示すように、下記の油による処理は、Or43a受容体を発現する細胞内のcAMP濃度の増加をもたらした:チラミン;LFO;BSO;LFO及びチラミン;BSO及びチラミン;フォルスコリン;チラミン及びフォルスコリン;LFO及びフォルスコリン;LFO、フォルスコリン及びチラミン;BSO;並びにBSO、チラミン及びフォルスコリン。さらに図29及び30を参照すると、Or83b受容体を発現する細胞内のcAMP産生の約34、32及び64の増加が、約20μMチラミン、約50μgLFOml及び約50μgBSOmlそれぞれによる処理に応じて生じた。チラミン及びLFOによる同時処理に応じて、それぞれ一つの単独での効果に比べて、cAMP産生に対する拮抗効果が認められた。一方、BSO及びチラミンによる同時処理に応じて、相乗効果が認められた。フォルスコリンの存在下で、cAMPの産生において約3000倍の増大が認められた。フォルスコリン予備処理細胞をチラミン又はLFOと共に投与すると、フォルスコリンそれ自体での効果よりもcAMP産生において約10~13の増大が認められた。フォルスコリン予備処理細胞に対するBSOの添加は、これらの細胞におけるフォルスコリン誘発cAMP産生よりも約22大きいcAMP産生の増大を誘発した。また、その他のある種の植物精油、例えば本出願明細書に明示した植物精油による処理は、Or43a受容体又はOr83b受容体を発現する細胞内で細胞内cAMP濃度の変化をもたらした。実施例12キイロショウジョウバエに対する組成物の毒性試験組成物から2種類のアセトン溶液を調製した。次いで、試験濃度のアセトンを、底の約3cm上に印をつけたガラス瓶に加えた。このガラス瓶を、前記の印から頸部の間の領域を除いた瓶の内面に、試験組成物の薄膜が残るように回転させた。処理した瓶にハエを導入する前に、全ての瓶を約10秒間空気にさらしてアセトンの完全な蒸発を確実にした。アセトンの蒸発を終えた後に、雌雄が混ざったハエの成虫約10匹をそれぞれの瓶に加え、瓶に綿栓で蓋をした。暴露の約24時間後に死虫率を観察した。実施例13野生型ショウジョウバエ及びチラミン受容体突然変異バエに対するライラックフラワー油及びブラックシードオイルの毒性野生型キイロショウジョウバエ及びチラミン受容体突然変異ショウジョウバエを、LFO及びBSOの毒性を調べるためのモデルとして使用した。これらの油の毒性は、実施例12に記載の方法を使用して調べた。以下の表C及びDに関して、両方の化学物質は、野生型キイロショウジョウバエに対して有毒であった。LFOは、両方のキイロショウジョウバエに対してBSOよりも約300倍有毒であった。LFOのLC50は、約25~30ngmm2の付近にあり、BSOの対応する値は約94μgcm2であった。これに対して、LFOは、チラミン受容体突然変異バエに対してBSOよりも少なくとも約1000倍毒性が小さかった。ショウジョウバエに対する両方の化学物質の毒性は、チラミン受容体によって伝えられる。チラミン受容体の突然変異体は、ショウジョウバエに対するLFOの毒性を著しく低下させるが、同じ突然変異体はBSOに対してより感受性のショウジョウバエ系を発生する。実施例14農場アリに対する組成物の忌避効果組成物の忌避効果を試験するために成虫昆虫を無作為に選択し、個々には印をつけなかった。反復試験当たり約5匹の昆虫を使用した。それぞれの処理について約3回の反復試験を使用した。未処理対照試験は、同じ条件下で維持された同じ大きさの個体群反復試験に対する溶媒のみの施用を含む。濾紙を前記組成物で処理した。約3分の風乾の後に、濾紙をシャーレに置き、昆虫に対する忌避を行った。昆虫をシャーレに放ち、一匹の昆虫を同時にシャーレの向こう側に放った。1個以上のストップウォッチを使用して、シャーレの濾紙上で又は未処理表面で過ごした時間を、最大約300秒間記録した。忌避率を次のように算出した:RR=全試験時間RR>0の場合には、組成物が忌避効果、すなわちより多くの昆虫が対照表面よりも処理表面から離れて忌避されるという効果を有するとみなし;RR<0の場合には、組成物は忌避効果をもたないとみなす。実施例15農場アリに対するライラックフラワー油及びブラックシードオイルの忌避効果農場アリに対するLFO及びBSOの忌避効果を、実施例14に記載の方法を使用して調べた。表E及びFに示すように、BSOは、農場アリに対してLFOよりもよい忌避性を実証した。農場アリに対して約90及び100の忌避性が、LFO及びBSOそれぞれによって得られた。また、LPO及びBSOはまた、農場アリに対して暴露24時間以内に100死虫率を誘導した。BSOで処理したシャーレはまた、アリに対する忌避性に対するBSOの残留効果を扱うためにも使用した。前記の忌避性プロトコールに従って1日当たり5匹のアリを使用した。同時に、BSOについて経時毒性を調べた。毒性実験では、アリを上記と同じ処理表面に約10秒間暴露し、次いで新しい容器に移した。暴露の約24時間後に死虫率データを記録した。1日当たりにつきアリ5匹を使用した。表Gに示すように、BSOは農場アリに対して最大4日間忌避性を示した。実施例16農場アリに対するdリモネン、αピネン及びpシメンの単独及び組み合わせの忌避効果種々の植物精油の忌避効果を、該試験油で濾紙を処理することによって試験した。室温で約5分経過した後に、濾紙をシャーレに置き、アリを一度に導入した。忌避性は、実施例14に記載のようにして調べた。油は、単独で試験した。また、複数の油を混合して組成物を形成し、次いでこれを試験した。表Hに関して、dリモネン、αピネン及びpシメンそれぞれは、単独で忌避性を実証した。しかし、複数の油を混合して組成物A、すなわちdリモネン、αピネン及びpシメンをそれぞれ約13ずづ含有する組成物を形成すると、相乗効果があり、忌避率が著しく増大した。同様に、表Iに関して、dリモネン及びαピネンそれぞれは、単独で忌避性を実証した。しかし、複数の油を混合して組成物B、すなわちdリモネン及びαピネンをそれぞれ約半分ずづ含有する組成物を形成すると、相乗効果があり、忌避率が著しく増大した。実施例17農場アリに対するリナロール、dリモネン、αピネン、pシメン及びタイム油の単独及び組み合わせの忌避効果種々の植物精油の忌避効果を、該試験油で濾紙を処理することによって試験した。室温で約5分経過した後に、濾紙をシャーレに置き、アリを一度に導入した。忌避性は、実施例14に記載のようにして調べた。油は、単独で試験した。また、複数の油を混合して組成物を形成し、次いでこれを試験した。表Jに示すように、dリモネン、αピネン及びpシメン及びタイム油それぞれは忌避性を示すが、組成物C、すなわち前記の油類を約25ずつ含有する組成物は、単独で使用されるその成分油それぞれの忌避性を越える忌避性を実証した。同様に、表Kに示すように、リナロール、αピネン、pシメン及びタイム油それぞれは忌避性を示すが、組成物D、すなわち前記の油類を約25ずつ含有する組成物は、単独で使用されるその成分油それぞれの忌避性を越える忌避性を実証した。同様に、表Lに示すように、リナロール、αピネン及びpシメンそれぞれは忌避性を示すが、組成物E、すなわち前記の油類を約13ずつ含有する組成物は、単独で使用されるその成分油それぞれの忌避性を越える忌避性を実証した。実施例18農場アリに対するαピネン、タイム油、αツヨン、サビネンの単独及び組み合わせの忌避効果種々の植物精油の忌避効果を、該試験油で濾紙を処理することによって試験した。室温で約5分経過した後に、濾紙をシャーレに置き、アリを一度に導入した。忌避性は、実施例14に記載のようにして調べた。油は、単独で試験した。また、複数の油を混合して組成物を形成し、次いでこれを試験した。表Mに示すように、αピネン、タイム油、αツヨン及びサビネンそれぞれは忌避性を示すが、組成物F、すなわち前記の油類を約25ずつ含有する組成物は、単独で使用されるその成分油それぞれの忌避性を越える忌避性を実証した。実施例19農場アリに対するdリモネン、pシメン、チモール、カルバクロール及びゲラニオールの単独及び組み合わせの忌避効果種々の植物精油の忌避効果を、該試験油で濾紙を処理することによって試験した。室温で約5分経過した後に、濾紙をシャーレに置き、アリを一度に導入した。忌避性は、実施例14に記載のようにして調べた。油は、単独で試験した。また、複数の油を混合して組成物を形成し、次いでこれを試験した。表Nに示すように、dリモネン、pシメン、チモール及びカルバクロールそれぞれは忌避性を示すが、組成物G、すなわち前記の油類を約25ずつ含有する組成物は、単独で使用されるその成分油それぞれの忌避性を越える忌避性を実証した。同様に、表Oに示すように、dリモネン、pシメン及びチモールそれぞれは忌避性を示すが、組成物H、すなわち前記の油類を約13ずつ含有する組成物は、単独で使用されるその成分油それぞれの忌避性を越える忌避性を実証した。同様に、表Pに示すように、dリモネン、pシメン、チモール及びゲラニオールそれぞれは忌避性を示すが、組成物I、すなわち前記の油類を約25ずつ含有する組成物は、単独で使用されるその成分油それぞれの忌避性を越える忌避性を実証した。実施例20農場アリに対するアントラニル酸リナリル、αピネン、dリモネン、pシメン及びゲラニオールの単独及び組み合わせの忌避効果種々の植物精油の忌避効果を、該試験油で濾紙を処理することによって試験した。室温で約5分経過した後に、濾紙をシャーレに置き、アリを一度に導入した。忌避性は、実施例14に記載のようにして調べた。油は、単独で試験した。また、複数の油を混合して組成物を形成し、次いでこれを試験した。表Qに示すように、ゲラニオール、dリモネン、pシメン及びアントラニル酸リナリルそれぞれは忌避性を示すが、組成物J、すなわちゲラニオール約40、dリモネン約30、pシメン約10、αピネン約10及びアントラニル酸リナリル約10を含有する組成物は、単独で使用されるその成分油それぞれの忌避性を越える忌避性を実証した。実施例21農場アリに対するdリモネン、チモール、αテルピネオール、酢酸ピペロニル、ピペロニルアミン及びピペロナールの単独及び組み合わせの忌避効果種々の植物精油の忌避効果を、該試験油で濾紙を処理することによって試験した。室温で約5分経過した後に、濾紙をシャーレに置き、アリを一度に導入した。忌避性は、実施例14に記載のようにして調べた。油は、単独で試験した。また、複数の油を混合して組成物を形成し、次いでこれを試験した。表Rに示すように、dリモネン、チモール、αテルピネオール、酢酸ピペロニル、ピペロニルアミン及びピペロナールそれぞれは忌避性を示すが、組成物K、すなわちdリモネン約20、チモール約30、αテルピネオール約20、酢酸ピペロニル約10、ピペロニルアミン約10及びピペロナール約10を含有する組成物は、単独で使用されるその成分油それぞれの忌避性を越える忌避性を実証した。実施例22農場アリに対するゲラニオール、dリモネン、オイゲノール、リンデノール及びフェニルアセトアルデヒドの単独及び組み合わせの忌避効果種々の植物精油の忌避効果を、該試験油で濾紙を処理することによって試験した。室温で約5分経過した後に、濾紙をシャーレに置き、アリを一度に導入した。忌避性は、実施例14に記載のようにして調べた。油は、単独で試験した。また、複数の油を混合して組成物を形成し、次いでこれを試験した。表Sに示すように、ゲラニオール、dリモネン、オイゲノール、リンデノール及びフェニルアセトアルデヒドそれぞれは忌避性を示すが、組成物L、すなわちゲラニオール約50、dリモネン約20、オイゲノール約10、リンデノール約10、及びフェニルアセトアルデヒド約10を含有する組成物は、単独で使用されるその成分油それぞれの忌避性を越える忌避性を実証した。実施例23オオアリに対するゲラニオール、レモングラス油、オイゲノール及び鉱油の単独及び組み合わせの忌避効果種々の植物精油の忌避効果を、該試験油で濾紙を処理することによって試験した。室温で約5分経過した後に、濾紙をシャーレに置き、アリを一度に導入した。忌避性は、実施例14に記載のようにして調べた。油は、単独で試験した。また、複数の油を混合して組成物を形成し、次いでこれを試験した。表Tに示すように、ゲラニオール、レモングラス油及びオイゲノールそれぞれは忌避性を示すが、組成物M、すなわちゲラニオール約50、レモングラス油約40及びオイゲノール約10を含有する組成物は、単独で使用されるその成分油それぞれの忌避性を越える忌避性を実証した。ゲラニオール、レモングラス油及びオイゲノールは全て、米国環境保護局及び食品医薬品局によって安全であると一般にみなされており、それ自体、EPA農薬登録要件を免除されている。同様に、表Uに示すように、ゲラニオール及びレモングラス油それぞれは忌避性を示すが、組成物N、すなわちゲラニオール約70及びレモングラス約30を含有する組成物は、単独で使用されるその成分油それぞれの忌避性を越える忌避性を実証した。さらにまた、表Vに示すように、組成物O、すなわちゲラニオール約60、レモングラス油約30及び鉱油約10を含有する組成物を形成するための鉱油の添加は、ゲラニオール及びレモングラス油の相乗作用に影響を及ぼさなかった。鉱油単独は、忌避性を実証しなかったが、組成物を安定させるのに役立ち、活性成分の蒸発を抑える。ゲラニオール及びレモングラス油と同様に鉱油は、GRAS化合物である。実施例24オオアリに対するゲラニオール、チモール、レモングラス油及び鉱油の単独及び組み合わせの忌避効果種々の植物精油の忌避効果を、該試験油で濾紙を処理することによって試験した。室温で約5分経過した後に、濾紙をシャーレに置き、アリを一度に導入した。忌避性は、実施例14に記載のようにして調べた。油は、単独で試験した。また、複数の油を混合して組成物を形成し、次いでこれを試験した。表Wに示すように、ゲラニオール、チモール及びレモングラス油それぞれは忌避性を示すが、組成物P、すなわちゲラニオール約50、チモール約20、レモングラス油約20及び鉱油約10を含有する組成物は、単独で使用されるその成分油それぞれの忌避性を越える忌避性を実証した。ゲラニオール、チモール、レモングラス油、オイゲノール及び鉱油は全て、米国環境保護局及び食品医薬品局によって安全であると一般にみなされており、それ自体、EPA農薬登録要件を免除されている。実施例25オオアリに対するブラックシードオイル、ライラックフラワー油、ゲラニオール、チモール、レモングラス油及び鉱油の単独及び組み合わせの忌避効果種々の植物精油の忌避効果を、該試験油で濾紙を処理することによって試験した。室温で約5分経過した後に、濾紙をシャーレに置き、アリを一度に導入した。忌避性は、実施例14に記載のようにして調べた。油は、単独で試験した。また、複数の油を混合して組成物を形成し、次いでこれを試験した。表Xに示すように、ゲラニオール、チモール及びタイム油それぞれは忌避性を示す。表Yに示すように、BSO、LFO、ゲラニオール、チモール、タイム油、鉱油、サフラワー油及びヒマシ油の種々の組み合わせを含有する組成物Q~Vは、高められた忌避性を示す。実施例26オオアリに対する市販忌避剤DEET29の忌避効果種々の植物精油から調製した種々の組成物の忌避効果と比較するために、REPELという名前で購入し得る昆虫防除剤DEET29の市販忌避剤を、濾紙をDEET29で処理することによってオオアリに対して調べた。室温で約5分経過した後に、濾紙をシャーレに置き、アリを一度に導入した。忌避性は、実施例14に記載のようにして調べた。表Zに示すように、29DEETは、0日目で約984の忌避率を有していた。LFO、BSO及び本発明の組成物の忌避率を比較でき、及びその幾つかの場合には、29DEETの忌避率よりも高かった。実施例27オオアリに対する市販忌避剤DEETの単独及びゲラニオール、チモール及びレモングラス油、又はゲラニオール、Dリモネン、オイゲノール、リンデノール及びフェニルアセトアルデヒドとの組み合わせの忌避効果市販の忌避剤DEET及び種々の植物精油の忌避効果を、試験油で濾紙を処理することによって試験した。室温で約5分経過した後に、濾紙をシャーレに置き、アリを一度に導入した。忌避性は、実施例14に記載のようにして調べた。油は、単独で試験した。また、複数の油を混合して組成物を形成し、次いでこれを試験した。表AA及びBBに示すように、約5~10の濃度のDEETによる処理は、忌避の徴候を示さなかった。しかし、表AAに示すように、組成物W、すなわちゲラニオール約25、チモール10、レモングラス油10及び鉱油を含有する組成物と組み合わせると、忌避率は100に達する。同様に、表BBに示すように、組成物X、すなわちゲラニオール約25、dリモネン10、オイゲノール5、リンデノール5、フェニルアセトアルデヒド5及び鉱油を含有する組成物と組み合わせると、忌避率は約97~98であった。また、表AA及びBBに示すように、種々の油をDEETと組み合わせると、高められた忌避性が示された。実施例28アタマシラミに対する組成物の殺虫効果エジプト共和国アレキサンドリア、Karmos地域に住んでいる約4~11歳の女の子及び男の子から、生きているアタマジラミPediculushumanuscapitusの成虫を採取した。この昆虫を目の細かいシラミ検出用の櫛を使用して採取し、一緒にプールした。採取したシラミをシャーレで飼い及び採取の約30分以内に試験に使用した。試験する種々の濃度の組成物を水で調製した。これらの組成物の殺虫効果を市販の殺シラミ剤イベルメクチンの殺虫効果と比較するために、イベルメクチンを水に溶解した。それぞれの濃度の組成物約1mlをシャーレに施用し、イベルメクチン溶液約1mlをシャーレに施用し、そして水約1mlを対照のシャーレに施用した。約10匹のアタマジラミ成虫をそれぞれのシャーレに導入した。処理シャーレ及び対照シャーレを連続観察下で保持し、LT100を観察した。LTとは、所定の割合の昆虫を殺すのに必要な時間をいう;従って、LT100は、シラミを100殺すのに必要な時間をいう。アタマジラミは、硬い物体に対する応答が認められない場合には死んだとみなす。実施例29アタマシラミに対するゲラニオール、Dリモネン、ベンジルアルコール、Pシメン及びライラックフラワー油を含有する組成物の殺虫効果組成物Y、すなわちpシメン約20、ライラックフラワー油約40、ベンジルアルコール約30及び鉱油約10を含有する組成物の殺虫効果を、実施例28に記載の方法を使用して調べた。この組成物のLT100を、市販の殺シラミ剤イベルメクチンのLT100と比較した。表CCに示すように、組成物Yで処理したシラミは、イベルメクチンで処理したシラミよりも早く死んだ。実施例30蚊に対する組成物の忌避効果A.経口投与無毛又は毛を剃ったマウス及びモルモットを使用して、経口投与された組成物の忌避効果を試験した。試験油例えば、ライラックフラワー油又はブラックシードオイル又は試験組成物を、約10匹の前記齧歯動物に経口投与した。対照物質、例えば鉱油を、約10匹の前記齧歯動物に経口投与した。約30分後に、各齧歯動物を密閉容器に入れた。各容器に約20匹の蚊を導入した。各容器を約1時間観察した。それぞれの蚊が齧歯動物の表面で過ごした時間を記録し、蚊によって生じた齧歯動物の皮膚の外傷の個数を記録した。蚊は、対照物質の投与を受けた齧歯動物上で過ごした時間よりも、試験組成物の投与を受けた齧歯動物上で過ごした時間が短かった。試験組成物の投与を受けた齧歯動物は、対照物質の投与を受けた齧歯動物よりも外傷が少なかった。B.局所投与無毛又は毛を剃ったマウス及びモルモットを使用して、局所投与された組成物の忌避効果を試験した。試験油例えば、ライラックフラワー油又はブラックシードオイル又は試験組成物を、約10匹の前記齧歯動物の皮膚に局所投与した。対照物質、例えば鉱油を、約10匹の前記齧歯動物の皮膚に局所投与した。約30分後に、各齧歯動物を密閉容器に入れた。各容器に約20匹の蚊を導入した。各容器を約1時間観察した。蚊がネズミの表面で過ごした時間を記録し、蚊によって生じた齧歯動物の皮膚の外傷の個数を記録した。蚊は、対照物質の投与を受けた齧歯動物上で過ごした時間よりも、試験組成物の投与を受けた齧歯動物上で過ごした時間が短かった。試験組成物の投与を受けた齧歯動物は、対照物質の投与を受けた齧歯動物よりも外傷が少なかった。実施例31蚊に対する組成物の忌避効果約3個のケージそれぞれに、約7~10日齢のネッタイイエカ約100匹を放った。蚊は約12時間飢えさせた。それぞれのケージに、砂糖水を浸したワタを満たした4個の容器を供給した。4個の容器のうちの3個は、試験する組成物約1000ppmで無作為に処理し、残りの1個は未処理対照として役立てた。これらの容器をそれぞれのケージの四隅に置き、試験する組成物をそれぞれの隅に添加した後に約0時間、1時間、2時間、4時間及び6時間の間隔で着地回数を数えた。前記容器を、暴露間隔の間にケージから取り出した。各暴露間隔は、約5分間続けた。表DDに記載の組成物の忌避効果をこの方法を使用して試験した。LFO、クミン油、ゲラニオール、タイム油、及びレモングラス油は、米国環境保護局及び食品医薬品局によって安全であるとみなされており、それ自体、EPA農薬登録要件を免除されている。表DDに挙げた組成物をそれぞれの容器に添加した後に約0時間、1時間、2時間、4時間及び6時間の間隔で着地回数を数えた。着地回数を表EEに示す。このデータを使用して忌避率を算出し、表FFに示した。それぞれの暴露間隔で、組成物EE、AA及びBBはほぼ100の忌避率を示した。6時間後でも、該組成物は蚊に対して100の忌避率を示した。実施例32赤アリに対する植物精油を含有する組成物の忌避効果及び殺虫効果を試験する方法赤アリに対する植物精油を含有する種々の組成物の殺虫効果を、次の方法で試験した。ペーパーディスクを、それぞれの試験する組成物約20μlで処理し、処理したディスクそれぞれを瓶に入れた。未処理ペーパーディスクは、対照の瓶に入れた。また、ペーパーディスクを100DEET約20μlで処理し、組成物の殺虫効果と公知の市販の昆虫防除剤DEETの殺虫効果と比較するために瓶に入れた。それぞれの瓶に赤アリ約3匹を導入し、瓶の開口部をワタで密封し、昆虫が逃げるのを防止した。昆虫を前記組成物に約1時間又はそれ以下暴露し、死虫率を記録した。赤アリに対する植物精油を含有する種々の組成物の忌避効果を、次の方法で試験した。ペーパーディスクを、それぞれの試験する組成物約200μlで処理し、瓶に入れた。未処理ペーパーディスクは、対照の瓶に入れた。また、ペーパーディスクを100DEET約200μlで処理し、組成物の忌避効果と公知の市販の昆虫防除剤DEETの忌避効果と比較するために瓶に入れた。赤アリをそれぞれの瓶に導入した。処理したペーパーディスクに向かう昆虫の挙動及び回数を約5分間監視した。赤アリによるペーパーディスクに向かう回数を記録した。残留性を、殺虫効果及び忌避効果に関して、ペーパーディスクを試験する組成物で処理し、処理したペーパーディスクを実験室条件下で所定の時間保ち、そして赤アリを処理ペーパーディスクに前記のようにして暴露することによって試験した。実施例33赤アリに対する植物精油を含有する組成物の忌避効果及び殺虫効果表GGに記載の組成物の殺虫効果及び忌避効果を、実施例32に記載の方法を使用して試験した。未処理ディスクは、赤アリに対して毒性もないし、赤アリを忌避もしない。それぞれの組成物は、ペーパーディスクを前記組成物で処理後、該ペーパーディスクに赤アリを約0分、6時間、1日、3日、5日又は7日間暴露させた場合に、DEETの死虫率に匹敵する100の死虫率をもたらした。表HHに示すように、赤アリは、ペーパーディスクを処理するのに使用した組成物によって忌避された。また、残留性に関して、組成物は、ペーパーディスクに施用後少なくとも1週間その効力を保持することによってDEETよりも効能が優れ、これに対してDEETは1日後に効能を失い始めた。表HHは、処理したペーパーディスクへの赤アリの移動の回数を示す。表に記載の時間、0分、6時間、1日、3日、5日、又は7日は、組成物によるペーパーディスクの処理と、処理したペーパーディスクに対する赤アリの暴露との間のおおよその経過時間を示す。実施例34赤アリに対する植物精油を含有する組成物の忌避効果及び殺虫効果表JJに記載の組成物の殺虫効果及び忌避効果を、実施例32に記載の方法を使用して試験した。前記組成物のそれぞれによる処理は、忌避効果と殺虫効果を生じた。種々の変更及び改変が本発明において本発明の範囲又は精神から逸脱することなくなし得ることは、当業者には明らかであろう。明細書及び実施例は、単なる例としてみなされ、本発明の範囲又は精神を限定することを目的とするものではないことが意図される。本明細書で引用した参考文献及び刊行物は、本明細書に参考として組み込まれる。特に明示しない限りは、明細書、実施例及び特許請求の範囲で使用した成分の量を表す全ての数値、反応条件のような性質などは、全ての場合に約という用語で修飾されると理解されるべきである。従って、特に明示しない限りは、明細書、実施例及び特許請求の範囲で挙げた数値パラメーターは、本発明によって決定されると考えられる所定の性質に応じて変化し得る近似である。