ワクチンであって、ウィルスワクチン株由来のウィルス抗原を含み、前記ウィルス抗原は、ウィルスワクチン株のウィルス調製物に由来し、前記ウィルスワクチン株のウィルス調製物は、感染性ウィルス粒子のサブポピュレーションを含み、前記感染性ウィルス粒子のサブポピュレーションは、前記ウィルス調製物のウィルス粒子総量又はウィルス抗原総量に対する割合で表され、前記ウィルス調製物のウィルス粒子総量又はウィルス抗原総量に対する感染性ウィルス粒子のサブポピュレーションの割合は、事前に定義された閾値を超えており、前記ワクチン株とは異なるウィルス株に対して、少なくとも部分的なサブタイプ間又はサブタイプ内の交差免疫応答をもたらす、ワクチン。前記ウィルスは、ヒト又は動物に感染できる、請求項1に記載のワクチン。前記ウィルスは、インフルエンザウィルス、HIV、DENV、又はFMDVである、請求項2に記載のワクチン。前記ウィルス抗原は、前記ウィルスの表面抗原である、請求項1に記載のワクチン。前記ウィルス調製物は、細胞培養物、もしくは孵化鶏卵、又はウィルスの増殖を可能にする適切な宿主から得られる、請求項1に記載のワクチン。前記ウィルス調製物中の感染性ウィルス粒子のサブポピュレーションは、プラーク形成単位試験PFU、組織培養感染量TCID50、卵感染量EID50、及び致死量LD50を含むウィルス感染試験によって測定され、前記ウィルス粒子総量又はウィルス抗原総量は、血球凝集試験、ELISA、ウエスタンブロット、総蛋白質試験を含むウィルス総計試験によって測定される、請求項1に記載のワクチン。前記感染性ウィルス粒子のサブポピュレーションの割合の事前に定義された閾値は、異なる感染性ウィルス粒子のサブポピュレーションの割合を有するウィルス調製物のセットを準備する工程、前記ウィルス調製物のセット由来のウィルス抗原を有するワクチンを調製する工程、調製したワクチンで適切な宿主を免疫する工程、ウィルスのチャレンジ株を用いて、免疫した宿主にチャレンジする工程、チャレンジ結果を分析する工程、によって定義され、前記のチャレンジ株は、前記ウィルスワクチン株とは異なるものであり、前記事前に定義された閾値は、所望の免疫によってもたらされたウィルス調製物の割合値として定義される、請求項1に記載のワクチン。前記ウィルス抗原は、精製ウィルス表面抗原、ウィルス由来のスプリット、ウィルスのウイロゾーム、又は不活化全粒子ワクチンを含む、請求項1に記載のワクチン。ワクチンの生産方法であって、ウィルスワクチン株のウィルス調製物を準備する工程、前記ウィルス調製物からウィルス抗原を得る工程、及び前記ウィルス抗原と、ワクチンを作るために生理的に許容可能なアジュバントとを混合する工程、を含み、前記のウィルスワクチン株のウィルス調製物は、感染性ウィルス粒子のサブポピュレーションを含み、前記感染性ウィルス粒子のサブポピュレーションは、ウィルス調製物のウィルス粒子総量又はウィルス抗原総量に対する割合で表され、前記ウィルス調製物のウィルス粒子総量又はウィルス抗原総量に対する感染性ウィルス粒子のサブポピュレーションの割合は、事前に定義された閾値を超えており、前記ワクチンは、前記ワクチン株とは異なるウィルス株に対して、少なくとも部分的なサブタイプ間又はサブタイプ内の交差免疫応答をもたらす、生産方法。前記ウィルスは、ヒト又は動物に感染できる、請求項9に記載の生産方法。前記ウィルスは、インフルエンザウィルス、HIV、DENV、又はFMDVである、請求項10に記載の生産方法。前記ウィルス抗原は、ウィルスの表面抗原である、請求項9に記載の生産方法。前記ウィルス調製物は、細胞培養物、もしくは孵化鶏卵、又はウィルスの増殖を可能にする適切な宿主から得られる、請求項9に記載の生産方法。前記ウィルス調製物中の感染性ウィルス粒子のサブポピュレーションは、プラーク形成単位試験PFU、組織培養感染量TCID50、卵感染量EID50、及び致死量LD50を含むウィルス感染試験によって測定され、前記ウィルス粒子総量又はウィルス抗原総量は、血球凝集試験、ELISA、ウエスタンブロット、総蛋白質試験を含むウィルス総計試験によって測定される、請求項9に記載の生産方法。前記感染性ウィルス粒子のサブポピュレーションの割合の事前に定義された閾値は、異なる感染性ウィルス粒子のサブポピュレーションの割合を有するウィルス調製物のセットを準備する工程、前記ウィルス調製物のセット由来のウィルス抗原を有するワクチンを調製する工程、調製したワクチンで適切な宿主を免疫する工程、ウィルスのチャレンジ株を用いて、免疫した宿主にチャレンジする工程、チャレンジ結果を分析する工程、によって定義され、前記のチャレンジ株は、前記ウィルスワクチン株とは異なるものであり、前記事前に定義された閾値は、所望の免疫によってもたらされたウィルス調製物の割合値として定義される、請求項9に記載の生産方法。前記ウィルス抗原は、精製ウィルス表面抗原、ウィルス由来のスプリット、ウィルスのウイロゾーム、又は不活化全粒子ワクチンを含む、請求項9に記載の生産方法。被検体への免疫のための請求項1に記載のワクチンの使用であって、前記ワクチンはウィルス感染を予防又は治療する、使用。請求項17に記載の使用であって、前記被検体は、ヒト又は動物である、使用。<実施例>以下、本発明の原理の説明を唯一の目的として実施例を提供する。この実施例は、本発明を限定することを意図するものではない。Iインフルエンザウィルス1ウィルス株インフルエンザAブタ広東012002を華南の健康豚から分離した。2ニワトリ胚のウィルス増殖十日齢の孵化卵をウィルス複製に使用した。卵に、ウィルスストック由来の異なる濃度の希釈溶液を有する接種物02mlを摂取させた。摂取後の卵を、指定した期間、適温でインキュベーションした。インキュベーション終了時に、胚を冷却して殺し、卵を12~60時間2~8°Cで保存した。冷却した孵化卵由来の尿膜腔液を回収した。3HA試験とプラーク形成試験HA試験及びプラーク形成試験は技術的によく知られている。ニワトリ赤血球をHA試験に使用した。MDCK細胞をプラーク形成試験に使用した。この結果を表1にまとめた。PFUは感染粒子の指標として見なした。また、HA力価はヘマグルチニン蛋白質の総量の指標として見なした。計算上では、1HAユニットは5x106ウィルス粒子ヘマグルチニン粒子HAPに等しい。現在のインフルエンザワクチンにおいて、ヘマグルチニンの量は、ワクチンの用量を決定するために使用される唯一の指標である。ここで、HA力価HAPに対するPFUの比率を、ワクチンとしての有効性を試験するためのウィルスストックの選択に使用した。36時間インキュベーションした106倍希釈溶液のグループは、2番目に良い比率をもたらした24時間では、比率は最も高かったが、非常に低いHA力価であった。抗原の総量は、実務で用いるには低すぎた。。一方で、72時間インキュベーションした102倍希釈溶液のグループは、比率が最も低かった但し、最も高いHAを示した。これは、インフルエンザワクチン作製のための現在の手順に適していると考えられる。。そこで、これら2つのグループを以降の実験に用いた。SDSPAGEゲルをウィルス調製物中のHA蛋白質の定量のために用いた。ウィルス特異的血清を用いて、ELISAで定量化を行った。4精製はじめに、回収した尿膜腔液を中程度の速度の遠心分離範囲4000~14000gで精製した。次に、ショ糖勾配遠心によって分離させた。35~55のフラクションをワクチン調整のために収集した。5ワクチン組成物及び調整物未処理の尿膜腔液又は精製ウィルスを01ホルマリンによって不活性化させた。その後、ミネラルオイルを混ぜ、乳化ワクチンを作製した。6免疫抗体ELISAデータ、HIデータ10日齢のひよこに、500ulの乳化ワクチンで後頸部の皮下から免疫した。血清をチャレンジ前に収集した。血球凝集抑制HI試験では、ウィルス懸濁液を、コレラ濾液ビブリオコレラ培養物から得たで事前処理した血清サンプルの段階2倍希釈溶液とともにインキュベートした。次に、赤血球を希釈溶液に加え、インキュベーション後、血球凝集の完全な抑制を示す試験物質の最大希釈溶液をHI抗体力価として定義した。7チャレンジ免疫後20日のワクチン摂取ニワトリに対して、H5N1株の1つ30LD50でチャレンジした。チャレンジから5日後に、各群で生き残ったニワトリをカウントした。102倍希釈溶液72時間、精製済由来のウィルスでワクチン接種したグループ、及び106倍希釈溶液36時間、未精製由来のウィルスでワクチン接種したグループでは、H5N1チャレンジに対する部分的な防御が見られた生存数はそれぞれ5又は7。しかし、102倍希釈溶液72時間、未精製由来のウィルスでワクチン接種したグループでは、H5N1チャレンジに対する防御が見られなかった生存数は0。IIFMDV1ウィルス早い増殖性と安定性のため、1つのFMDV株をワクチン株として選択したVS。また、2つのFMDV株をチャレンジ株として選択したCS1及びCS2。VSはCS1に対して973の、CS2に対して773の相同性を有していた。全てのウィルスを一般的な条件及び手順で、BHK21細胞で増殖させた。2異なる希釈溶液及び回収時間における、VSのTCID50、PFU、及びELISAの結果VSの実験用ストックを下記の一般的な条件及び手順でBHK21細胞で調製し、80°Cで保存した。VSの実験用ストックを10、100、1000、10000、及び100000倍に希釈し、BHK21細胞に感染させた。TCID50の計算のために、感染後10、12、14、16、18、20、及び22時間にCPEを記録した。また、PFU力価及びELISA実験のために、各サンプルを3回凍結解凍させた。CPE、PFU、及びELISA試験は技術的によく知られている。後述の表2及び表3に結果をまとめた。TCID50及びPFUの値は、感染ウィルス粒子のサブポピュレーションを意味し、ELISA力価は、ウィルス粒子総量又はウィルス抗原の総量を意味する。従って、ウィルス抗原の総量に対する感染性ウィルス粒子のサブポピュレーションの割合は、ELISA測定値に対するTCID50及びPFUの値として表すことができる。ここで、この割合の値は任意であるが、どのウィルス調製物が感染性ウィルス粒子のより大きなサブポピュレーションを含むかを明らかにする上で非常に有用である。任意の方法を適切に使用すれば、事前に定義した感染性ウィルス粒子のサブポピュレーションの割合の値を、ワクチン生産のためのウィルス調製物の調製条件の選択に使用できる。さらに、ウィルス調製物中のウィルス抗原の総量は、他の方法例えば、全ウィルス抗原を精製することによって決定でき、また、ウィルス抗原の濃度は公知の方法に従って決定できる。3ワクチン調製、免疫、及びチャレンジ表2及び3から、ワクチン生産のためのウィルス調製物の2つの生産条件を選択した10倍希釈、及び1000倍希釈で、両方とも回収前に18時間インキュベートした。いくつかのより大きな希釈条件がより大きな割合をもたらしたのは事実だが、全ウィルス抗原の量ELISA測定値によって示されるは非常に小さかった。実務的には、全ウィルス抗原の合理的な生産量と、所望の割合とのバランスをとることが必要である。もし生産量が低すぎると、非経済的になる。以下に示す一般的な手順でワクチンを生産した。FMDV陰性ブタを2週間のインターバルを置いて、2回免疫した。2回目の免疫から4週間後、ブタに対してCS1又はCS2でチャレンジし、18日間観察した。全ての実験は、以下の標準的なプロトコルで行った。結果を以下にまとめる。表4の通り、ワクチン中の感染性ウィルス粒子のサブポピュレーションの割合の増加が、より低い相同性を有するウィルスに対する優れた防御をもたらした。本発明を特定の実施形態を参照して説明したが、その実施形態は例示であること、及び本発明の範囲はそれらに限定されないことは理解される。本発明の別の実施形態は、本発明が属する分野の当業者に明らかである。そのような代わりの実施形態は、本発明の趣旨及び範囲内に包含されると考えられる。結果的に、本発明の範囲は添付の特許請求の範囲に記載されており、上述の説明によってサポートされている。