アシネトバクター属に属する微生物とデルフチア属に属する微生物とのコンソーシアムを有効量含有することを特徴とする鉱物油類で汚染された汚染土壌又は汚染地下水の浄化剤。アシネトバクター属に属する微生物がアシネトバクターべネチアヌスであり、デルフチア属に属する微生物がデルフチアアシドボランスであることを特徴とする請求項1に記載の汚染土壌又は汚染地下水の浄化剤。アシネトバクターべネチアヌスに属する前記微生物が塩分を含む環境下で鉱物油類分解活性を有することを特徴とする請求項2に記載の汚染土壌又は汚染地下水の浄化剤。アシネトバクターべネチアヌスに属する前記微生物がNaCl濃度0~6WVの範囲で生育可能な微生物であることを特徴とする請求項2又は3に記載の汚染土壌又は汚染地下水の浄化剤。アシネトバクターべネチアヌスに属する前記微生物が下記菌学的性質及び下記生理生化学的性質を有する微生物であることを特徴とする請求項2~4のいずれか1項に記載の汚染土壌又は汚染地下水の浄化剤。A.菌学的性質1細胞形態:幅04~05μm、長さ10~15μmの桿菌2グラム染色性:陰性3胞子の有無:陰性4運動性:陰性5コロニー形態48時間培養イ直径:25~30mmロ色調:淡黄色ハ形:円形ニ隆起状態:半レンズ状ホ周縁:全縁ヘ表面の形状など:スムーズト透明度:不透明チ粘調度:生クリーム様6生育温度試験°C:12~37°CB.生理生化学的性質1硝酸塩還元:陰性2インドール産生:陰性3ブドウ糖酸性化:陰性4アルギニンジヒドロラーゼ:陰性5ウレアーゼ:陰性6エスクリン加水分解:陰性7ゼラチン加水分解:陽性8β-ガラクトシダーゼ:陰性9ブドウ糖資化性:陰性10Lアラビノース資化性:陰性11Dマンノース資化性:陰性12Dマンニトール資化性:陰性13NアセチルDグルコサミン資化性:陰性14マルトース資化性:陰性15グルコン酸カリウム資化性:陰性16nカプリン酸資化性:陽性17アジピン酸資化性:陽性18dlリンゴ酸資化性:陽性19クエン酸ナトリウム資化性:陽性20酢酸フェニル資化性:陰性21チトクロームオキシダーゼ:陰性22アゼライン酸資化性:陽性23マロン酸資化性:陽性24Lアルギニン資化性:陽性25エタノール資化性:陽性26安息香酸資化性:陽性アシネトバクターべネチアヌスに属する前記微生物が16SrRNA遺伝子の塩基配列が配列表の配列番号1に記載の配列を有する微生物であることを特徴とする請求項2~5のいずれか1項に記載の汚染土壌又は汚染地下水の浄化剤。アシネトバクターべネチアヌスに属する前記微生物が独立行政法人産業総合研究所の特許生物寄託センターに寄託している受領番号FERMAP-22211の微生物であることを特徴とする請求項2~6のいずれか1項に記載の汚染土壌又は汚染地下水の浄化剤。デルフチアアシドボランスに属する前記微生物がNaCl濃度0~5WVの範囲で生育可能な微生物であることを特徴とする請求項2~7のいずれか1項に記載の汚染土壌又は汚染地下水の浄化剤。デルフチアアシドボランスに属する前記微生物が下記菌学的性質及び下記生理生化学的性質を有する微生物であることを特徴とする請求項2~8のいずれか1項に記載の汚染土壌又は汚染地下水の浄化剤。A.菌学的性質1細胞形態:幅04~05μm、長さ10~15μmの桿菌2グラム染色性:陰性3胞子の有無:陰性4運動性:陰性5コロニー形態48時間培養イ直径:25~30mmロ色調:淡黄色ハ形:円形ニ隆起状態:半レンズ状ホ周縁:全縁ヘ表面の形状など:スムーズト透明度:不透明6生育温度試験°C:4~37°CB.生理生化学的性質1硝酸塩還元:陰性2インドール産生:陽性3ブドウ糖酸性化:陰性4アルギニンジヒドロラーゼ:陰性5ウレアーゼ:陰性6エスクリン加水分解:陰性7ゼラチン加水分解:陽性8β-ガラクトシダーゼ:陰性9ブドウ糖資化性:陰性10Lアラビノース資化性:陰性11Dマンノース資化性:陰性12Dマンニトール資化性:陽性13NアセチルDグルコサミン資化性:陰性14マルトース資化性:陰性15グルコン酸カリウム資化性:陽性16nカプリン酸資化性:陰性17アジピン酸資化性:陽性18dlリンゴ酸資化性:陽性19クエン酸ナトリウム資化性:陰性20酢酸フェニル資化性:陰性21チトクロームオキシダーゼ:陽性デルフチアアシドボランスに属する前記微生物が16SrRNA遺伝子の塩基配列が配列表の配列番号2に記載の配列を有する微生物であることを特徴とする請求項2~9のいずれか1項に記載の汚染土壌又は汚染地下水の浄化剤。デルフチアアシドボランスに属する前記微生物が独立行政法人産業総合研究所の特許生物寄託センターに寄託している受領番号FERMAP-22210の微生物であることを特徴とする請求項2~10のいずれか1項に記載の汚染土壌又は汚染地下水の浄化剤。アシネトバクター属に属する微生物とデルフチア属に属する微生物とのコンソーシアムを用いて汚染土壌又は汚染地下水中の鉱物油類を分解させることを特徴とする汚染土壌又は汚染地下水の浄化方法。アシネトバクター属に属する微生物がアシネトバクターべネチアヌスであり、デルフチア属に属する微生物がデルフチアアシドボランスであることを特徴とする請求項12に記載の汚染土壌又は汚染地下水の浄化方法。アシネトバクターべネチアヌスに属する前記微生物が塩分を含む環境下で鉱物油類分解活性を有することを特徴とする請求項13に記載の汚染土壌又は汚染地下水の浄化方法。アシネトバクターべネチアヌスに属する前記微生物がNaCl濃度0~6WVの範囲で生育可能な微生物であることを特徴とする請求項13又は14に記載の汚染土壌又は汚染地下水の浄化方法。アシネトバクターべネチアヌスに属する前記微生物が下記菌学的性質及び下記生理生化学的性質を有する微生物であることを特徴とする請求項13~15のいずれか1項に記載の汚染土壌又は汚染地下水の浄化方法。A.菌学的性質1細胞形態:幅04~05μm、長さ10~15μmの桿菌2グラム染色性:陰性3胞子の有無:陰性4運動性:陰性5コロニー形態48時間培養イ直径:25~30mmロ色調:淡黄色ハ形:円形ニ隆起状態:半レンズ状ホ周縁:全縁ヘ表面の形状など:スムーズト透明度:不透明チ粘調度:生クリーム様6生育温度試験°C:12~37°CB.生理生化学的性質1硝酸塩還元:陰性2インドール産生:陰性3ブドウ糖酸性化:陰性4アルギニンジヒドロラーゼ:陰性5ウレアーゼ:陰性6エスクリン加水分解:陰性7ゼラチン加水分解:陽性8β-ガラクトシダーゼ:陰性9ブドウ糖資化性:陰性10Lアラビノース資化性:陰性11Dマンノース資化性:陰性12Dマンニトール資化性:陰性13NアセチルDグルコサミン資化性:陰性14マルトース資化性:陰性15グルコン酸カリウム資化性:陰性16nカプリン酸資化性:陽性17アジピン酸資化性:陽性18dlリンゴ酸資化性:陽性19クエン酸ナトリウム資化性:陽性20酢酸フェニル資化性:陰性21チトクロームオキシダーゼ:陰性22アゼライン酸資化性:陽性23マロン酸資化性:陽性24Lアルギニン資化性:陽性25エタノール資化性:陽性26安息香酸資化性:陽性アシネトバクターべネチアヌスに属する前記微生物が16SrRNA遺伝子の塩基配列が配列表の配列番号1に記載の配列を有する微生物であることを特徴とする請求項13~16のいずれか1項に記載の汚染土壌又は汚染地下水の浄化方法。アシネトバクターべネチアヌスに属する前記微生物が独立行政法人産業総合研究所の特許生物寄託センターに寄託している受領FERMAP-22211の微生物であることを特徴とする請求項13~17のいずれか1項に記載の汚染土壌又は汚染地下水の浄化方法。デルフチアアシドボランスに属する前記微生物がNaCl濃度0~5WVの範囲で生育可能な微生物であることを特徴とする請求項13~18のいずれか1項に記載の汚染土壌又は汚染地下水の浄化方法。デルフチアアシドボランスに属する前記微生物が下記菌学的性質及び下記生理生化学的性質を有する微生物であることを特徴とする請求項13~19のいずれか1項に記載の汚染土壌又は汚染地下水の浄化方法。A.菌学的性質1細胞形態:幅04~05μm、長さ10~15μmの桿菌2グラム染色性:陰性3胞子の有無:陰性4運動性:陰性5コロニー形態48時間培養イ直径:25~30mmロ色調:淡黄色ハ形:円形ニ隆起状態:半レンズ状ホ周縁:全縁ヘ表面の形状など:スムーズト透明度:不透明6生育温度試験°C:4~37°CB.生理生化学的性質1硝酸塩還元:陰性2インドール産生:陽性3ブドウ糖酸性化:陰性4アルギニンジヒドロラーゼ:陰性5ウレアーゼ:陰性6エスクリン加水分解:陰性7ゼラチン加水分解:陽性8β-ガラクトシダーゼ:陰性9ブドウ糖資化性:陰性10Lアラビノース資化性:陰性11Dマンノース資化性:陰性12Dマンニトール資化性:陽性13NアセチルDグルコサミン資化性:陰性14マルトース資化性:陰性15グルコン酸カリウム資化性:陽性16nカプリン酸資化性:陰性17アジピン酸資化性:陽性18dlリンゴ酸資化性:陽性19クエン酸ナトリウム資化性:陰性20酢酸フェニル資化性:陰性21チトクロームオキシダーゼ:陽性デルフチアアシドボランスに属する前記微生物が16SrRNA遺伝子の塩基配列が配列表の配列番号2に記載の配列を有する微生物であることを特徴とする請求項13~20のいずれか1項に記載の汚染土壌又は汚染地下水の浄化方法。デルフチアアシドボランスに属する前記微生物が独立行政法人産業総合研究所の特許生物寄託センターに寄託している受領番号FERMAP-22210の微生物であることを特徴とする請求項13~21のいずれか1項に記載の汚染土壌又は汚染地下水の浄化方法。本発明が解決しようとする課題は、従来のバイオレメディエーションでは、鉱物油類で汚染された広範囲の土壌や地下水を速やかに浄化できない点である。本発明は、上記事情に鑑みてなされたものであって、鉱物油類分解活性を有する微生物コンソーシアムを用いて鉱物油類で汚染された汚染土壌又は汚染地下水を速やかに浄化する浄化剤とこの浄化剤を用いた汚染土壌又は汚染地下水の浄化方法を提供することを目的とする。本発明者らは、上述の課題を解決すべく鋭意検討した結果、東京湾海水から重質油に対する分解特性の高い菌を複数種類分離し、それらの組み合わせにより、高い油分解率を安定的に示すことを発見し、これらの菌の安全性の確認菌株特定によるBSLの確認、ミジンコ及び藻類に対する毒性試験の実施、環境中での分析方法の確立リアルタイムPCR法による定量方法の確立及び土壌からの抽出率の確認、大量培養方法の確立を行った。すなわち、本発明は、アシネトバクター属に属する微生物とデルフチア属に属する微生物とのコンソーシアムを有効量含有した汚染土壌又は汚染地下水の浄化剤とこの浄化剤を用いた汚染土壌又は汚染地下水の浄化方法である。ここで、アシネトバクター属に属する微生物としてはアシネトバクターべネチアヌスを使用し、デルフチア属に属する微生物としてはデルフチアアシドボランスを使用することができる。また、アシネトバクターべネチアヌスに属する前記微生物の最適生育温度は10~37°Cである。また、この微生物は塩分を含む環境下で鉱物油類分解活性を有しており、NaCl濃度0~6WVの範囲で生育可能である。また、この微生物の菌学的性質及び生理生化学的性質は下記の通りであり、独立行政法人産業総合研究所の特許生物寄託センターに受領番号FERMAP-22211として寄託した。A.菌学的性質1細胞形態:幅04~05μm、長さ10~15μmの桿菌2グラム染色性:陰性3胞子の有無:陰性4運動性:陰性5コロニー形態48時間培養イ直径:25~30mmロ色調:淡黄色ハ形:円形ニ隆起状態:半レンズ状ホ周縁:全縁ヘ表面の形状など:スムーズト透明度:不透明チ粘調度:生クリーム様6生育温度試験°C:12~37°CB.生理生化学的性質1硝酸塩還元:陰性2インドール産生:陰性3ブドウ糖酸性化:陰性4アルギニンジヒドロラーゼ:陰性5ウレアーゼ:陰性6エスクリン加水分解:陰性7ゼラチン加水分解:陽性8β-ガラクトシダーゼ:陰性9ブドウ糖資化性:陰性10Lアラビノース資化性:陰性11Dマンノース資化性:陰性12Dマンニトール資化性:陰性13NアセチルDグルコサミン資化性:陰性14マルトース資化性:陰性15グルコン酸カリウム資化性:陰性16nカプリン酸資化性:陽性17アジピン酸資化性:陽性18dlリンゴ酸資化性:陽性19クエン酸ナトリウム資化性:陽性20酢酸フェニル資化性:陰性21チトクロームオキシダーゼ:陰性22アゼライン酸資化性:陽性23マロン酸資化性:陽性24Lアルギニン資化性:陽性25エタノール資化性:陽性26安息香酸資化性:陽性また、アシネトバクターべネチアヌスに属する前記微生物は16SrRNA遺伝子の塩基配列が配列表の配列番号1に記載の配列を有している。また、デルフチアアシドボランスに属する前記微生物の最適生育温度は4~37°Cである。また、この微生物はNaCl濃度0~5WVの範囲で生育可能である。また、この微生物の菌学的性質及び生理生化学的性質は下記の通りであり、独立行政法人産業総合研究所の特許生物寄託センターに受領番号FERMAP-22210として寄託した。A.菌学的性質1細胞形態:幅04~05μm、長さ10~15μmの桿菌2グラム染色性:陰性3胞子の有無:陰性4運動性:陰性5コロニー形態48時間培養イ直径:25~30mmロ色調:淡黄色ハ形:円形ニ隆起状態:半レンズ状ホ周縁:全縁ヘ表面の形状など:スムーズト透明度:不透明6生育温度試験°C:4~37°CB.生理生化学的性質1硝酸塩還元:陰性2インドール産生:陽性3ブドウ糖酸性化:陰性4アルギニンジヒドロラーゼ:陰性5ウレアーゼ:陰性6エスクリン加水分解:陰性7ゼラチン加水分解:陽性8β-ガラクトシダーゼ:陰性9ブドウ糖資化性:陰性10Lアラビノース資化性:陰性11Dマンノース資化性:陰性12Dマンニトール資化性:陽性13NアセチルDグルコサミン資化性:陰性14マルトース資化性:陰性15グルコン酸カリウム資化性:陽性16nカプリン酸資化性:陰性17アジピン酸資化性:陽性18dlリンゴ酸資化性:陽性19クエン酸ナトリウム資化性:陰性20酢酸フェニル資化性:陰性21チトクロームオキシダーゼ:陽性また、デルフチアアシドボランスに属する前記微生物は16SrRNA遺伝子の塩基配列が配列表の配列番号2に記載の配列を有している。次に、本発明による汚染土壌地下水の浄化方法を、ベンゼントルエン、キシレン等を対象とした場合と、燃料油や潤滑油等を対象とした場合に分けて説明する。ベンゼントルエン、キシレン等単独の汚染の場合、浄化に酸素を多くは要しないため、本菌及び栄養塩窒素やりんの無機塩、必須元素微量の金属類を添加することで浄化が可能である。これら薬剤の添加方法としては、注入井戸を用いる方法井戸注入法、自走式ボーリングマシンを用いた直接注入ロット注入、高圧噴射攪拌法、重機を用いた土壌攪拌工法等がある。分解速度を上昇するため、酸素供給工法を併用することも可能である。燃料油や潤滑油を対象とした浄化の場合、油含有量濃度が高いこと、浄化対象が混合物となりその分解には十分な酸素が必要となるため、土壌地下環境に効率よく酸素を供給することが重要となる。酸素の供給方法として、従前からのエアーズパーシングバイオスパーシングのほか、マイクルナノバブルを利用する方法二重管井戸工法、バイオ循環工法等、過酸化マグネシウムや過酸化水素等の過酸化物を用いる方法がある。本発明によれば、菌を東京湾の海水から抽出した経緯から、該菌は通性嫌気性菌であり、淡水から塩濃度の高い環境でも油分解特性が高く、通常、酸素が多くは存在しない土壌地下水汚染から汚染土壌を掘削し地上で微生物分解を行うランドファーミング、沿岸域のように塩類濃度の高い水域や底質等幅広い環境の浄化に適用することができるという効果がある。すなわち、本発明によれば、土壌中や地下水中の鉱物油類を低コストで速やかに分解除去することができ、特に、塩分濃度の高い土壌中や地下水中の鉱物油類を低コストで速やかに分解除去することができるという効果がある。本発明者らは難分解性の潤滑油などを効率よく分解する微生物の探索研究を実施し、東京湾の表面海水中から高い鉱物油類分解能を示す二つのフローラを得た。これらのフローラを地下水土壌汚染へ応用するためには、それらの鉱物油類分解能が保持され、安全性を満たす必要があると思われる。複数の微生物が含まれるフローラの場合、その分解能や群集構造が、継代培養や保存等の過程で変化する可能性が考えられる。そこで、floraAおよびfloraBは、鉱物油類のみを炭素源とした継代培養および鉱物油類を用いずに高栄養培地を用いた培養を行い、継代培養や保存等の過程で鉱物油類分解能が保持されることを確認した。次に、これら二つのフローラの中から、安定した高い鉱物油類分解能を有するとともに、ベンゼンに対しても高い分解能を示すfloraAを選択し、構成菌の単離と同定を行い、安全性を評価した。また、単離した菌の組合せによる鉱物油類分解能についても調べた。ここで、鉱物油類としてはシェルテラスオイルC46C22~C36の炭素範囲で、C30~C32にピークを持つ。を用いた。この鉱物油類は97質量以上の基油と3質量以下の添加剤で構成されている工業用潤滑油である。東京湾表面海水中から分離した高い鉱物油類分解能を示すfloraA培養液100μlを、10mlの鉱物油類分解菌増殖培地を含む50mlの遠心チューブに接種した後、27°C、140rpmで振とう培養した。培養14日後にその培養液100μlを分取し、新しいMSM培地に接種した。以後同様の操作を繰り返すことにより継代培養を行った。なお、MSM培地はNH4NO34gKH2PO447gNa2HPO40119gCaCl22H2O001gMgS047H2O1gMnCl24H2O001gFeS047H2O0015gをイオン交換水1Lに添加した後pHを7に調整し、オートクレーブ滅菌したものを使用した。また、添加潤滑油は孔径02μmのフィルターで濾過滅菌した後、培地に05添加した。高い油分解能が見られたfloraAの菌叢をpH7に調整した蛋白分解物寒天培地に画線培養し、得られたコロニーの単離を行った。その結果、floraAから、k1、k2、k3、k4の4種類の菌が単離された。次に、得られた単離菌の全ての組合せについて油分解率を調べるために、単離菌それぞれについて酵母エキス20gとポリペプトン40gを1Lのイオン交換水に添加した培地で培養した。そして、それぞれの単離菌の培養液50μlをMSM培地に接種し、27°Cで7日間振とう培養し、ThinLayerChromatographyFlameIonizationDetectionにより油分解率を調べた。また、培養14日目の培養液について、培養液と等量のヘキサンで培養液中の油分を抽出し、Itoらの方法に基づいてTLCFID法により油分解能を測定した。Itoらの方法:ItoHHosokawaRMorikawaMOkuyamaHAturbineoildegradingbacterialconsortiumfromsoilsofoilfieldsanditscharacteristicsInternationalBiodeteriorationandBiodegradation200861223232次に、単離菌k1、k2、k3、k4の全ての組合せパターンについて油分解率を測定したところ、図1に示す通りであった。そして、これらの結果の中で、70以上の油分解率を示すものは図2に示す通りであった。これらの結果から、以下のことが言える。鉱物油類分解の場合、1種類の菌だけでは高い分解能を示さず、2種類以上の菌の組合せにより、初めて高い分解能を示すので、鉱物油類分解に関して複数の微生物の相互作用が重要であることがわかる。また、単離菌4種類混合の場合より、2種類又は3種類混合の場合の方が油分解率が高いので、鉱物油類分解には4種類の菌全てが必要ではないことがわかる。更に、油分解率が70以上の高分解率を示した組合せのいずれにも、k3が共通して含まれていることから、微生物群集での油分解において、k3菌は重要な役割を演じていると推察される。ただし、k3菌単独では油分解率が低いことから、他の菌がk3菌の油分解を促進する役割を果たしていると考えられる。次に、k1菌とk3菌についてゲノムDNAを抽出した後、PCRを行い、16SrRNA遺伝子の塩基配列を決定した。k1の塩基配列は配列表の配列番号2に示す通りであり、k3菌の塩基配列は配列表の配列番号1に示す通りであった。そして、この塩基配列に基づき、定法により、データベース中の登録配列と相同性を比較し、これらの菌の種を同定した。k1菌はDelftiaacidovoransに属する微生物であり、k3菌はAcinetobactervenetianusに属する微生物であることがわかった。以上の結果から、日本細菌学会発行病原体等安全取扱管理指針によると、DelftiaacidovoransS2はBSL1に該当し、AcinetobactervenetianusS4はBSLに該当なしであり、ミジンコ及び藻類に対する影響はないことを確認している。生育温度の検討nutrientbroth培地ニュートリエントブロス:肉エキス30g、ペプトン50g、水10L、pH68±02を、12本の25mLの試験管に10mLずつ入れ、そのうち6本にDelftiaacidovoransS2を植菌し、別の6本にAcinetobactervenetianusS4を植菌した。それらの試験管を4°C、10°C、20°C、27°C、37°C、50°Cで、DelftiaacidovoransS2を植菌した試験管とAcinetobactervenetianusS4を植菌した試験管を1本ずつ静置し、10間培養し、生育温度を検討した。結果は表1に示す通りであった。表1において、-、、、の印は、-が生育せず、が生育、が生育良好、が非常に良く生育するを意味する。DelftiaacidovoransS2の生育可能範囲は、437°Cの範囲であり、1037°Cの範囲が最適生育温度であることが分かる。AcinetobactervenetianusS4の生育可能範囲は、1037°Cの範囲であり、この温度範囲内で同等の良好な生育を示した。生育pHの検討nutrientbroth培地ニュートリエントブロス:肉エキス30g、ペプトン50g、水10Lについて、塩酸と水酸化ナトリウムを用いてpHを4567891011に調整し、8種類のpHが異なる培地を調製した。25mLの試験管にpHを調整した培地10mLを入れ、S2菌を植菌した1種類のpHにつき1本。S4菌についても同様に行った。それらの試験管を、27°Cで7日間振盪培養した。結果は表2に示す通りであった。表2において、-、、、の印は、-が生育せず、が生育、が生育良好、が非常に良く生育することを意味する。S2菌の生育可能範囲は、pH510の範囲であり、pH79の範囲が最適生育pHであることが分かる。S4菌の生育可能範囲は、pH510の範囲であり、pH79の範囲が最適生育pHであることが分かる。耐NaClの検討nutrientbroth培地に、NaClを濃度が0、1、2、3、4、5、6、7、8、9、10になるように加え、この培地でDelftiaacidovoransS2とAcinetobactervenetianusS4を、27°Cで7日間振盪培養し、耐NaClの濃度を検討した。結果は表3に示す通りであった。表3において、-、、、の印は、-が生育せず、が生育、が生育良好、が非常に良く生育するを意味する。DelftiaacidovoransS2は、NaCl濃度05wvの範囲で生育可能であった。AcinetobactervenetianusS4は、NaCl濃度06wvの範囲で生育可能であった。次に、DelftiaacidovoransS2の菌学的性質及び生理生化学的性質について調べたところ、下記の通りであった。なお、DelftiaacidovoransS2は独立行政法人産業総合研究所の特許生物寄託センターに受領番号FERMAP-22210として寄託した。A.菌学的性質1細胞形態:幅04~05μm、長さ10~15μmの桿菌2グラム染色性:陰性3胞子の有無:陰性4運動性:陰性5コロニー形態48時間培養イ直径:25~30mmロ色調:淡黄色ハ形:円形ニ隆起状態:半レンズ状ホ周縁:全縁ヘ表面の形状など:スムーズト透明度:不透明6生育温度試験°C:4~37°CB.生理生化学的性質1硝酸塩還元:陰性2インドール産生:陽性3ブドウ糖酸性化:陰性4アルギニンジヒドロラーゼ:陰性5ウレアーゼ:陰性6エスクリン加水分解:陰性7ゼラチン加水分解:陽性8β-ガラクトシダーゼ:陰性9ブドウ糖資化性:陰性10Lアラビノース資化性:陰性11Dマンノース資化性:陰性12Dマンニトール資化性:陽性13NアセチルDグルコサミン資化性:陰性14マルトース資化性:陰性15グルコン酸カリウム資化性:陽性16nカプリン酸資化性:陰性17アジピン酸資化性:陽性18dlリンゴ酸資化性:陽性19クエン酸ナトリウム資化性:陰性20酢酸フェニル資化性:陰性21チトクロームオキシダーゼ:陽性また、AcinetobactervenetianusS4の菌学的性質及び生理生化学的性質について調べたところ、下記の通りであった。なお、AcinetobactervenetianusS4は独立行政法人産業総合研究所の特許生物寄託センターに受領番号FERMAP-22211として寄託した。A.菌学的性質1細胞形態:幅04~05μm、長さ10~15μmの桿菌2グラム染色性:陰性3胞子の有無:陰性4運動性:陰性5コロニー形態48時間培養イ直径:25~30mmロ色調:淡黄色ハ形:円形ニ隆起状態:半レンズ状ホ周縁:全縁ヘ表面の形状など:スムーズト透明度:不透明チ粘調度:生クリーム様6生育温度試験°C:12~37°CB.生理生化学的性質1硝酸塩還元:陰性2インドール産生:陰性3ブドウ糖酸性化:陰性4アルギニンジヒドロラーゼ:陰性5ウレアーゼ:陰性6エスクリン加水分解:陰性7ゼラチン加水分解:陽性8β-ガラクトシダーゼ:陰性9ブドウ糖資化性:陰性10Lアラビノース資化性:陰性11Dマンノース資化性:陰性12Dマンニトール資化性:陰性13NアセチルDグルコサミン資化性:陰性14マルトース資化性:陰性15グルコン酸カリウム資化性:陰性16nカプリン酸資化性:陽性17アジピン酸資化性:陽性18dlリンゴ酸資化性:陽性19クエン酸ナトリウム資化性:陽性20酢酸フェニル資化性:陰性21チトクロームオキシダーゼ:陰性22アゼライン酸資化性:陽性23マロン酸資化性:陽性24Lアルギニン資化性:陽性25エタノール資化性:陽性26安息香酸資化性:陽性文献IntJSystEvolMicrobiol59118124のTable1に示されているAcinetobacter属細菌の種々化合物の資化性比較表に従い、S4菌とAcinetobactervenetianusstrainATCC31012について資化性を調べた。その結果、S4菌は上記項目~およびに示したすべての化合物に対して資化性陽性であった。それに対してAcinetobactervenetianusstrainATCC31012は、項目~の化合物には資化性陽性であったが、項目およびの化合物には資化性陰性であった。S4菌は、AcinetobactervenetianusstrainATCC31012の16SrRNA遺伝子とは100の相同性を有するが、資化性においては異なる性質を示した。次に、DelftiaacidovoransS2とAcinetobactervenetianusS4のコンソーシアム混合菌による軽油の分解能を調べた。実験に用いた鉱物油類としてはガソリンスタンドで販売されているディーゼル燃料を用いた。DelftiaacidovoransS2とAcinetobactervenetianusS4は前培養をして用いた。前培養培地100mLに、S2菌またはS4菌を植菌し、27°C、160rpmで2日間振とう培養した。この培養液を植菌液として用いた。前培養培地1Lの組成は、酵母エキス20gとポリペプトン40gであり、オートクレーブ滅菌したものを使用した。DelftiaacidovoransS2とAcinetobactervenetianusS4のそれぞれについて、前培養液1mLを、500mlの鉱物油類分解菌増殖培地を含む3Lのフラスコ3本に添加し、27°C、120rpmで振とう培養した。鉱物油類分解菌増殖培地としてはMSM培地に油05を添加した培地を用いた。MSM培地は淡水系の培地であり、1Lの組成はNH4NO34gKH2PO447gNa2HPO40119gCaCl22H2O001gMgSO47H2O1gMnCl24H2O001gFeSO47H2O0015gにNaOHでpHを7に調整し、オートクレーブ滅菌したものを使用した。また、添加潤滑油は孔径02μmのフィルターで濾過滅菌したものを使用した。培養開始後7、14、21日目の培養液について、JISK010224に基づいてノルマルヘキサン抽出物質として油分を定量した。なお、分解菌を添加しない培養液をコントロールとして使用した。結果は表4に示す通りであった。また、DelftiaacidovoransS2とAcinetobactervenetianusS4のコンソーシアム混合菌による灯油の分解能を調べた。鉱物油類として、灯油を用いた以外、実施例9と同様に実施した。結果は表5に示す通りであった。塩分濃度と鉱物油類分解能との関係を調べた。実験に用いた鉱物油類としては、シェルテラスオイルC46炭素数C22~C36のアルカンを含むを用いた。本製品は97質量以上の基油と3質量以下の添加剤で構成されている工業用潤滑油である。実験に用いたDelftiaacidovoransS2とAcinetobactervenetianusS4は前培養をして用いた。前培養培地100mLに、DelftiaacidovoransS2またはAcinetobactervenetianusS4を植菌し、27°C、160rpmで2日間振とう培養した。この培養液を植菌液として用いた。前培養培地1Lの組成は、酵母エキス20gとポリペプトン40gであり、オートクレーブ滅菌したものを使用した。DelftiaacidovoransS2またはAcinetobactervenetianusS4の前培養液100μlを、10mlの鉱物油類分解菌増殖培地を含む50mlのフラスコに添加し、27°C、120rpmで振とう培養した。ここで、鉱物油類分解菌増殖培地としては、NaCl濃度0の場合は、MSM培地に油05を添加、NaCl濃度110の場合、NaClを添加したMSM培地に油05を添加したものを用いた。MSM培地は淡水系の培地であり、1Lの組成はNH4NO34gKH2PO447gNa2HPO40119gCaCl22H2O001gMgSO47H2O1gMnCl24H2O001gFeSO47H2O0015gにNaOHでpHを7に調整し、オートクレーブ滅菌したものを使用した。また、添加潤滑油は孔径02μmのフィルターで濾過滅菌したものを使用した。培養開始後14日目の培養液について、培養液と等量のnヘキサンで培養液中の油分を抽出し、その抽出液と同量のステアリン酸内部標準物質のnヘキサン溶液10mgmLを混合し、TLCFIDシリカゲル薄層クロマトグラフィー-水素炎イオン化検出法法により油分の定量を行った。なお、分解菌を添加しない培養液をコントロールとして使用した。結果は図3に示す通りであった。50mLガラス遠沈管に、12メッシュ以下に揃えたシルト質土壌を120°Cで40分間オートクレーブ処理して調製した滅菌土壌を015g、鉱物油としてシェルテラスオイルC46炭素数C22~C36のアルカンを含むを20mgおよび無機培地表6を入れ、実施例11で調製したDelftiaacidovoransS2およびAcinetobactervenetianusS4をそれぞれ05mL加えて27°Cで振とう培養を行った。この試料の水分量は94wである。培養開始後14日目と21日目の培養液について、6mLのnヘキサンで培養液中の油分を2回抽出し、その抽出液と同量のステアリン酸内部標準物質のnヘキサン溶液10mgmLを混合し、TLCFIDシリカゲル薄層クロマトグラフィー-水素炎イオン化検出法法により油分の定量を行った。なお、分解菌を添加しない培養液をコントロールとして使用した。各培養液から抽出された鉱物油残存量を表7に示した。コントロールに対して、分解菌を添加した培養液中の鉱物油残存率は、培養7日目に30、培養21日目に10まで減少した。なお、シルト土壌とは、凝集して0020002mm程度の土塊を形成する物性の土壌を指す。