"抗菌、抗細菌、または芽胞発芽阻害効果を得るための天然のペルセアPersea属の種アボカド由来の抗菌剤、抗細菌剤、または芽胞発芽阻害化合物の濃縮物の製造方法であって、極性溶剤を用いて、種子または他のアボカドの植物組織たとえば、中果皮および/または葉を抽出する工程、および、その後、アボカドの極性溶剤抽出物からアセトゲニンを濃縮するか、直接、破砕した種子または他のアボカドの植物組織からアセトゲニンを濃縮する精製工程、または非極性溶剤を用いて、種子または他のアボカドの植物組織たとえば、中果皮および/または葉を抽出する工程、およびその後、アボカドの非極性溶剤抽出物からアセトゲニンを濃縮するか、直接、破砕した種子または他のアボカドの植物組織からアセトゲニンを濃縮する精製工程、を含む方法。極性溶剤が、C1C4アルコール、ジメチルスルホキシド、テトラヒドロフラン、アセトン、アセトニトリルと、非極性溶剤単独または組み合わせ、たとえばヘキサン、へプタン、エチルエーテル、酢酸エチル、石油エーテル、ブチルアルコール、クロロホルム、トルエン、メチルtertブチルエーテル、メチルイソブチルケトン、またはそれらの混合物とを使用する二相分配系を含むものである請求項1または2に記載の方法。二相分配系用の溶剤系として、各種の比のメタノールヘプタン、および/または水ヘキサン、および/または水ブタノール、および/またはメチルtertブチルエーテルアセトニトリル水、および/またはへプタン酢酸エチルアセトニトリル、へプタン酢酸エチルメタノール水を含むがそれらに限定されない溶剤系を単独また並行で使用して、どちらかの相に活性を濃縮する請求項1から3のいずれかに記載の方法。精製方法が、高速遠心分配クロマトグラフィーによる分配分離または向流クロマトグラフィーである請求項1から4のいずれかに記載の方法。濃縮物が、化合物:またはを含む請求項1から5のいずれかに記載の方法。濃縮物がさらに、式で表され、式中のR1が、水素またはアセチルであり、R2が、水素またはヒドロキシ保護基であり、R3が、1以上の炭素炭素二重結合を有するアルケニル基である化合物、および/または式:で表され、式中のR1が、水素またはアセチルであり、R2およびR4が、水素またはヒドロキシ保護基であり、R3が、1以上の炭素-炭素二重結合を有するアルケニル基である化合物を含む請求項1から6のいずれかに記載の方法。抽出および精製過程が、必要に応じて、濃縮または単離化合物のケン化を生じない請求項1から7のいずれかに記載の方法。請求項1から8のいずれかの抽出物を含む抗菌、抗細菌、または芽胞発芽阻止組成物または製品。組成物または製品が、経口、経皮、経腸、経鼻、経眼、舌下、経直腸、または経膣的投与に適した製剤組成物、魚類、甲殻類、魚代用品、甲殻類代用品、肉類、肉代用品、鶏肉製品、野菜、青菜類、ソース、乳液、飲料、ジュース類、ワイン類、ビール、乳製品、卵製品、ジャム、ゼリー、穀類製品、パン類、菓子類よりなるが、これらに限られない製品から選ばれる食料品、クリーム、ゲル、粉末、ローション、日焼け止め、口紅およびリップクリーム、ボディウォッシュ、ハーブ抽出物、細菌の発育を支える処方よりなるが、これらに限られない製品から選ばれる化粧品およびカウンタートップ、ドア、窓、ハンドル、外科用器具、医用器具、ヒトや動物の汚染を引き起こす可能性のある接触面よりなるが、これらに限られない製品から選ばれる表面を有する製品よりなる群から選ばれる請求項9に記載の抗菌、抗細菌、または芽胞発芽阻止組成物または製品。式:において、式中のR1が、水素またはアセチルであり、R2が、水またはヒドロキシ保護基であり、R3が、1以上のトランス型の炭素炭素二重結合を有するアルケニル基である化合物。化合物のC16およびC17の位置に二重結合を有する請求項11に記載の化合物。式:またはを有する請求項12に記載の化合物。抗細菌、抗菌、または芽胞発芽阻止作用を、そうした作用を必要としている患者または製品に対して提供するための組成物または製品を製造するための請求項1から8のいずれかの抽出物の使用。抗菌、抗細菌、または芽胞発芽阻止作用を、クロストリジウム属Clostridium、Bacillusバチルス属、アリキクロバチルスAlicyclobacillus属、およびリステリアListeria属を含むが、これらに限られない属の微生物、細菌、または芽胞に適用することができる請求項14に記載の使用。抗菌、抗細菌、または芽胞発芽阻止作用を、クロストリジウムボツリヌムClostridiumbotulinum、クロストリジウムペルフリンゲンスClostridiumperfringens、クロストリジウムディフィキレClostridiumdifficile、バチルスアントラシスBacillusanthracis、バチルスセレウスBacilluscereus、バチルスズブチリスBacillussubtilis、バチルスリキノホフミスBacilluslichniformis、アリシクロバチルスアシドテレストリスAlicyclobacillusacidoterrestris、アリシクロバチルスアシドフィルスAlicyclobacillusacidiphilus、リステリアモノサイトゲネスListeriamonocytogenesよりなるが、これらに限られない種から選ばれる微生物、細菌、または芽胞に適用することができる請求項15に記載の使用。本発明は、ペルセアアメリカナPerseaamericana、アボカドから、抗菌、抗細菌、または芽胞発芽阻止効果を得るための天然の抗菌、抗細菌、または芽胞発芽阻止化合物の濃縮された抽出物を得る一連の工程を提供する。本発明の一観点では、抽出物は、アボカドの種子、またはアボカド果実の可食部分である肉質の中果皮から得るものである。本発明の一観点では、アボカドの組織種子または中果皮からの抽出は、極性溶剤および非極性溶剤を用いた抽出によって行われるものである。本発明のこの観点の一実施形態は、グラム陽性細菌の栄養細胞および芽胞を含むが、それらに限られない細胞の発育に関して、抗菌、抗細菌、または芽胞発芽阻止効果を得るための天然のペルセアPersea属のアメリカナおよびグラティシマを含むが、それらに限られない種由来の抗菌剤、抗細菌剤、または芽胞発芽阻止化合物の濃縮物の製造方法であって、極性溶剤を用いて、種子または他のアボカドの植物組織たとえば、中果皮および/または葉を抽出する工程、および、その後、アボカドの極性溶剤抽出物からアセトゲニンを濃縮するか、直接、破砕した種子または他のアボカドの植物組織からアセトゲニンを濃縮する精製工程、または非極性溶剤を用いて、種子または他のアボカドの植物組織たとえば、中果皮および/または葉を抽出する工程、およびその後、アボカドの極性溶剤抽出物からアセトゲニンを濃縮するか、直接、破砕した種子または他のアボカドの植物組織たとえば、中果皮および/または葉からアセトゲニンを濃縮する精製工程、を含む方法である。本発明のこの観点の一実施形態で、抽出または精製に単独または混合物としてそれぞれ用いることのできる極性溶剤としては、C1C4アルコールによる分配分離または向流クロマトグラフィーである。たとえば、AlainPFoucaltCentrifugalPartitionChromatographyChromatographicSciencesSeriesvol68MarcelDekkerを参照されたい。CPCを用いた精製方法は、グラム陽性細菌の栄養細胞および芽胞の発育を阻止するアボカド由来の天然の抗菌化合物の濃度を増大4倍以上させて、同じ固形分濃度で評価した際のアボカドの種子の粗アセトン抽出物と比べて12~2倍以上高い抗細菌特性を付与することができる。本発明の別の観点では、抽出および精製過程は、必要に応じて、濃縮または単離化合物のケン化を生じることがないようにする。本発明のこの観点の別の実施形態では、抽出および精製過程は、必要に応じて、濃縮または単離化合物のケン化を生じることがないようにする。本発明の抽出物は、mzが329~381である化合物、または、以下のアセトゲニン、すなわち、ペルセアアメリカナPerseaamericanaから精製するか、生物活性を濃縮すべく化学合成することができるペルセノンA、ペルセノンB、または新規に見いだされた1アセトキシ2ヒドロキシ4オキソノナデカ516ジエン、または新規に見いだされた1アセトキシ2ヒドロキシ4オキソノナデカ1618ジエンの少なくとも1種を含んでいる。本発明の別の観点は、式Iで表される化合物である。式中のR1が、水素またはアセチルであり、R2が、水素またはヒドロキシ保護基であり、R3が、2以上のトランス状態の炭素炭素二重結合を有するアルケニル基である。ヒドロキシ保護基は、GreeneandWutsProtectiveGroupsinOrganicSynthesisWileyInterscienceに記載されたものをはじめとして、任意の公知のヒドロキシ保護基とすることができる。上述のように、式Iの化合物は、および状態ならびにシスおよびなどの立体異性体をすべて含むものである。本発明の目的では、トランス状態は、式CHCH2で表される末端アルケンも含むものである1アセトキシ2ヒドロキシ4オキソノナデカ1618ジエン参照。本発明のこの観点の一実施形態は、式Iの化合物であって、式中のR1が、水素またはアセチル、R2が、水素、またはヒドロキシ保護基、R3が、トランス状態の炭素-炭素二重結合2つを有するC5C22アルケニル基であるような化合物である。本発明のこの観点の別の実施形態は、式Iの化合物であって、式中のR1が、水素またはアセチル、R2が、水素、R3が、トランス状態の炭素-炭素二重結合2つを有するC5C22アルケニル基であるような化合物である。本発明のこの観点の別の実施形態は、式Iの化合物であって、式中のR1が、アセチル、R2が、水素、R3が、トランス状態の炭素-炭素二重結合2つを有するC12C18アルケニル基で、OR2に結合した炭素が、の方法を用い、ハロゲン化に記載された方法を用い、不飽和脂肪酸を得て、この不飽和脂肪酸を対応するメチルケトンに転化し、その後、この対応するメチルケトンを2アセトキシアセトアルデヒドと反応させることによって合成することができる。式Iの化合物の上記の形成方法は、具体例を示すために記載するもので、化合物を製造するにあたって用いることが可能なすべての方法を網羅することを意図するものではない。抽出物または化合物は、食料品をはじめとして細菌が発育しやすい組成物に、単独、または当業界で公知の他の抗菌物質と組みあわせて用いることができ、組みあわせる抗菌物質としては、特に栄養および芽胞状態の細菌の発育に対する抗菌活性を高める目的で用いるものとして、亜硝酸塩化合物、ナイシン、バクテリオシン、エチルラウロイルアルギネート、精油、エチレンジアミン四酢酸、アスコルビン酸誘導体、安息香酸誘導体を挙げることができるが、これらに限定されるものではない。細菌の栄養および芽胞形態の発育を阻止するこのアボカド抽出物、またはそれらから誘導された抽出物または化合物は、担体、賦形剤、カプセル形成剤、他の製剤成分とともに、固形状の製剤として、生物活性成分の適用性および安定性を改善することができる。本発明の抽出物、化合物、組成物は、経口、経皮、経腸、経鼻、経眼、経耳、舌下、経直腸、または経膣的に投与できるよう調製する。経皮投与は、局所適用または、経皮投与を行うことができる。経腸投与は、静脈、動脈、筋肉、皮下注射、ならびに輸液技術の利用を行うことができる。本発明の1種以上の化合物を、1種以上の無毒な製薬学的に許容しうる成分と一緒に配合して、組成物を調製することができる。これらの組成物の調製は、当業界で公知の技術、たとえば、RemingtonTheScienceandPracticeofPharmacy第21版、GoodmanGilman’sThePharmacologicalBasisofTherapeutics第11版、Ansel’sParmaceuticalDosageFormsandDrugDeliverySystems第8版、Allenら編、LippincottWilliamsWilkinsに教示された技術を適用することによって行うことができる。本発明の別の観点は、本発明の抽出物または化合物を含む食料品であって、魚類、甲殻類、魚代用品、甲殻類代用品、肉類、肉代用品、鶏肉製品、野菜、青菜類、ソース、乳液、飲料、ジュース類、ワイン類、ビール、乳製品、卵製品、ジャム、ゼリー、穀類製品、パン類、菓子類であるが、これらに限られない食料品を挙げることができる。本発明の別の観点は、本発明の抽出物または化合物を含む化粧品であって、クリーム、ゲル、粉末、ローション、日焼け止め、口紅およびリップクリーム、ボディウォッシュ、ハーブ抽出物、細菌が発育しやすい処方剤であるが、これらに限られない化粧品を挙げることができる。本発明の別の観点は、本発明の抽出物または化合物を含む表面を有する製品であって、カウンタートップ、ドア、窓、ハンドル、外科用器具、医用器具、ヒトや動物の汚染を引き起こす可能性のある接触面であるが、これらに限られない製品を挙げることができる。本発明の別の観点は、抗細菌、抗菌、または芽胞発芽阻止作用を、そうした作用を必要としている患者に付与するための、本発明の抽出物または単離化合物、またはそれらを含む組成物の使用である。本発明の別の観点は、抗細菌、抗菌、または芽胞発芽阻止作用を食品または化粧品組成物に付与するための、本発明の抽出物または単離化合物、またはそれらを含む組成物の使用である。本発明の別の観点は、表面に、抗細菌、抗菌、または芽胞発芽阻止作用を付与するための、本発明の抽出物または単離化合物、またはそれらを含む組成物の使用である。この作用は、その表面を、本発明の抽出物または単離化合物に接触させるか、本発明の抽出物または単離化合物を、その表面自体に積層または埋設することによって得ることができる。この抗菌、抗細菌、および/または芽胞発芽阻止作用は、クロストリジウム属Clostridium、Bacillusバチルス属、アリキクロバチルスAlicyclobacillus属、およびリステリアListeria属を含むが、これらに限られない属の微生物、細菌、または芽胞に適用することができる。抗菌、抗細菌、および/または芽胞発芽阻止作用は、クロストリジウムボツリヌムClostridiumbotulinum、クロストリジウムペルフリンゲンスClostridiumperfringens、クロストリジウムディフィキレClostridiumdifficile、バチルスアントラシスBacillusanthracisバチルスセレウスBacilluscereus、バチルスズブチリスBacillussubtilis、バチルスリキノホフミスBacilluslichniformis、アリシクロバチルスアシドテレストリスAlicyclobacillusacidoterrestris、アリシクロバチルスアシドフィルスAlicyclobacillusacidiphilus、リステリアモノサイトゲネスListeriamonocytogenesよりなるが、これらに限られない種から選ばれる微生物、細菌、または芽胞に適用することができる。本発明の抽出物および精製から得られた新規な化合物は、上記式Iで表される。抗菌、抗細菌、および/または芽胞発芽阻止作用を得るためには、式Iの化合物は、R3が1以上の炭素-炭素二重結合をを有することができ、この二重結合は、シスおよびトランス状態のいずれでもよい。式Iの化合物の範囲に含まれる一実施形態は、炭素-炭素二重結合が、C5C6、C12C13、C15C16、C16C17、またはそれらの任意の組み合わせの位置にあり、二重結合がシスまたはトランス結合のものである。式Iの化合物の範囲に含まれる別の実施形態は、炭素-炭素二重結合が、C5およびC6のみにあるか、および/またはC16およびC17、および/またはC12およびC13、および/またはC15およびC16の位置にあり、それらがシスまたはトランス結合のものである。この式Iの化合物の具体的な範囲内の例としては、下記を挙げることができるが、これらに限定されるものではない。さらに、抗菌、抗細菌、および/または芽胞発芽阻止作用を得るうえで、式Iの化合物は、単独で使用することも、下記式IIで表されるような化合物と組みあわせて使用することもできる。式中のR1が、水素またはアセチル、R2およびR4が、水素、またはヒドロキシ保護基、R3が、シスまたはトランス状態の炭素-炭素二重結合1つを有するアルケニル基である。本発明のこの観点の一実施形態は、式IIの化合物であって、式中のR1が、水素またはアセチル、R2およびR4が、水素、またはヒドロキシ保護基、R3が、シスまたはトランス状態の炭素-炭素二重結合1つを有するC5C22アルケニル基であるような化合物である。本発明のこの観点の別の実施形態は、式IIの化合物であって、式中のR1が、水素またはアセチル、R2およびR4が、水素、R3が、シスまたはトランス状態の炭素-炭素二重結合2つを有するC5C22アルケニル基であるような化合物である。本発明のこの観点の別の実施形態は、式IIの化合物であって、式中のR1が、アセチル、R2およびR4が、水素、R3が、トランス状態の炭素-炭素二重結合1つを有するC12C18アルケニル基で、R2およびR4に結合した炭素が、の化合物で、二重結合が、化合物のC16およびC17の位置にあるものである。本発明のこの観点の別の実施形態は、下記の式IIの化合物の使用である。この式IIの化合物は、式Iの化合物からケトンの還元によって合成することも、また、ジメチル13ジオキソラン4エタノールをR3MgX式中のR3は、上記定義の通り、Xは、ハロゲン化物であるの化合物と、杉山ら1982に開示された方法を使用して反応させることによって合成することもできる。本発明の別の観点では、抗細菌、抗菌、または殺芽胞/芽胞抑制作用は、少なくとも、他の公知の抗細菌、抗菌、または殺芽胞/芽胞抑制剤、たとえば、LAE、亜硝酸エステル、またはナイシンと同程度に効果がある。本発明の抽出物または単離化合物の使用は、天然精製物または天然精製物から容易に得られるので、非天然精製物あるいは容易には得られない他の公知の物質より有利である。非天然精製物の使用は、特に、使用にあたって規制当局による承認が必要である場合もあるような食料品や化粧品を製造する場合には、問題がある。本発明を、以下の実施例によってさらに詳細に説明するが、本発明は、これらの実施例に限定されるものではない。また、これらの実施例によって、本発明の範囲が限定されることを意図するものではないし、限定されると解釈されるべきでもない。実施例1-アボカド種子のアセトンおよびヘキサン抽出物の抗菌および殺芽胞活性アボカドの種子をコロイドミルにより破砕し、平均直径05~2mmの粒子を得た。アボカドの種子破砕物を、アセトンまたはヘキサンと、物質溶剤比が12となるよう混合した。混合物を25°Cにて24時間保管し、アボカド種子の未処理抽出物を得た。種子を、抽出物から、真空濾過法を用いて分離した。未処理抽出物を、ロータリーエバポレータを用いて、乾燥状態となるまで真空下で蒸発させ、得られた乾燥物を秤量し、最終濃度25mgmlとなるようアセトンに再溶解した。調整したサンプルを、抗菌試験および殺芽胞性の試験に用いた。粗抽出物の製造に用いたアボカド種子は、破砕後、芽胞形成菌に対する抗細菌活性に変化を生じることなく、25°C未満の温度で、酸素の存在または非存在下にて、14日間以上保存可能である。つまり、アボカド種子は、生物活性化合物を高濃度で含む抽出物の調製に使用するまで、そのまま、あるいは粉砕状態で保管することができる。実施例2-芽胞形成菌の栄養細胞およびヒートショック処理芽胞に対する、アボカド種子抽出物の比活性の、他の植物由来の物質との比較本発明の有効性は、マンゴー種子のカーネル仁から抗細菌性のある粗抽出物を調製することによって観察することができる。この粗抽出物が、芽胞形成菌の栄養細胞に対して抗菌活性を示すことは、従来技術として報告されている。アボカドおよびマンゴーのカーネル由来の粗抽出物を、実施例1に記載したようにして調製し、CスポロゲネスCsporogenesの栄養細胞とヒートショック処理芽胞に対するこれらの粗抽出物の抗菌活性を調べた。意外にも、アボカド種子抽出物のみが、本実施例で試験を行った細菌の二つの生理的状態、すなわち栄養細胞とヒートショック処理芽胞に対する活性を示した。マンゴカーネル抽出物は芽胞形成菌の栄養細胞に対しては抗菌活性を示したが、細菌の芽胞およびヒートショック処理芽胞の発育に対しては、抗菌活性を示さなかった。したがって、本実施例から示されるように、アボカド由来のこの化合物の化学的性状は、芽胞形成菌の栄養細胞、芽胞、およびヒートショック処理芽胞の発育を阻害するうえで、特段に有用である。実施例3-アボカド種子の粗アセトン抽出物および粗ヘキサン抽出物の抗細菌活性に対する振盪の影響実施例1と同様、抗細菌性の評価に用いるため、乾燥物をアセトンに最終濃度が25mgmlとなるよう再溶解させた。試験微生物としては、クロストリジウムボツリヌムClostridiumbotulinumの代替微生物として知られているクロストリジウムスポロゲネスClostridiumsporogenesを用いた。クロストリジウムの栄養細胞、未処理芽胞、ヒートショック処理芽胞に対する抗菌活性を、実施例1に記載した手順で調べた。クロストリジウムの栄養細胞、未処理芽胞、ヒートショック処理芽胞に対する、アボカド種子のヘキサン抽出物の抗菌特性については、振盪処理の有意な影響が認められた。抽出物の乾燥質量収量は振盪時の方が多いにもかかわらず、振盪処理を行わずに得た抽出物は、振盪処理を行って得られた抽出物と比べて高い抗菌活性を示した。実施例の結果からは、振盪によって、アボカド種子中に存在する抗菌活性のない他の化合物の抽出も増え、その結果、抗細菌活性のある化合物の濃度が希釈されてしまうことがわかる。したがって、アボカド種子の抗細菌性抽出物は、浸漬によって、できれば振盪を行わずに得るのが好ましい。実施例4-アボカド種子粗抽出物の抗菌特性に対する抽出時間および抽出溶剤の種類アセトン、エタノール、ヘキサンの影響乾燥物を、アセトンに、最終濃度が25mgmlとなるよう再溶解した。抗菌性アッセイでの試験微生物として、クロストリジウムスポロゲネスClostridiumsporogenesを、用いた。栄養細胞、未処理芽胞、ヒートショック処理芽胞に対するディスク阻止帯を用いた抗細菌活性の測定は、実施例1に記載の手順で実施した。ヘキサン抽出物の栄養細胞、芽胞、ヒートショック処理芽胞に対する抗細菌活性を100の発育阻止と見なして、同じ時間間隔をおいて測定した他の溶剤アセトン、エタノールとの比較を行った。栄養細胞に対する抗細菌活性についての結果を、図4に示す。同図の結果からわかるように、抽出時間30分間の時点で得られたエタノール抽出物は、ヘキサンによって同条件で得られた抽出物とまったく同じ活性を持っていた。一方、抽出時間30分間の時点で得られたアセトン抽出物は、ヘキサン抽出物の抗菌活性の70にとどまっていたのが、抽出時間5時間の時点では、ヘキサン抽出物の活性の80に達した。この実施例からもわかるように、アセトンもエタノールも極性溶剤であり、試験条件では、抽出時間の延長は、生理活性物質の濃度の希釈、および/または溶液の飽和を生じた。また、予想に反して、芽胞形成菌の栄養細胞に対して抗細菌性を有する化合物は、その性質ゆえに、アセトンよりエタノールを用いた方がよりよい回収が可能であった。これらの抽出物の未処理芽胞に対しての抗菌特性を結果を図5に示す。この結果からわかるように、抽出時間の延長05~24時間は、抽出溶剤としてアセトンとエタノールのいずれを用いた場合も違いを生じなかった。この場合も、エタノールは、未処理芽胞に対する抗菌特性を持つ化合物の抽出に関して選択性が高かった。ヒートショック処理芽胞の発育に対する各種抽出物の抗菌活性についての結果を図6に示す。図からわかるように、各抽出物で傾向が異なっていた。抽出時間30分の時点で、溶剤アセトンまたはエタノールは、抗細菌性分子の抽出に対して、等しく効果的であったのに、アセトンを溶剤として用いて抽出時間を延長した場合には、05~5時間の抽出時間の延長で発育阻止の100から80以下への低下を招くような抽出物中の抗細菌性分子濃度の有意な減少が観察され、その後活性は一定であった。エタノールは、抽出時間を延長しても、アセトンによる抽出の場合のように、対象化合物に関して容易に飽和することはなく、エタノールでは、05時間と5時間の抽出時間の間で違いは認められなかった。このように、本実施例からは、芽胞形成細菌の栄養細胞、未処理芽胞、ヒートショック処理芽胞の発育に対して阻止活性を持つ抗細菌性化合物の抽出に関して、エタノールはヘキサンと同様に効果的であることがわかる。実施例5-アボカド種子のアセトン抽出物の分画と、アボカド種子粉末のヘプタンメタノール二相非混和溶剤系による分画の比較本実施例に際しては、実施例1に記載した手順にしたがって、アボカド種子の未処理アセトン抽出物を得、乾燥状態まで蒸発させた。アボカド種子破砕物50gから得られた乾燥未処理アセトン抽出物を、100mlのヘプタン上相F002と100mlのメタノール下相F002よりなる二相非混和溶剤系の入った分液漏斗に直接加え、抽出物中の極性化合物と非極性化合物を分離させた図7A。前述の各相は、ロータリーエバポレータでそれぞれ乾燥状態まで蒸発させ、得られた乾燥物を秤量した。その後のクロストリジウムスポロゲネスClostridiumsporogenesに対しての抗細菌活性の評価に備えて、乾燥分画を、最終濃度が25mgmlとなるようアセトンに再溶解した。栄養細胞、未処理の芽胞、ヒートショック処理芽胞に対する抗細菌活性ディスク阻止帯の測定は、実施例1に記載の手順にしたがって実施した。ヒートショック処理芽胞についてディスク阻止帯について得られた結果からわかるのは、2種の互いに非混和性の溶剤によるアボカド種子破砕物の直接抽出を実施すると、上相に移動するそして、混入後、活性化合物の効果を希釈するような夾雑物の量を減少できることが示され、したがって、こうした二相分離による抽出方法は、芽胞発芽阻止化合物の1工程単離よりすぐれた選択肢であることが明らかになった。ただし、栄養細胞について発育の阻止を調べた抗細菌性試験では、どちらの方法も似たような結果となり、他方に比べて特に有益というわけではなかった。このように、本実施例では、本発明で実施した種子破砕物の直接抽出と、アボカド種子乾燥物のアセトン抽出物の分離という双方の評価の過程で、抗細菌性物質がヘプタンメタノール二相系の上相の方に濃縮されることが示された。しかし、下相にも残存活性が観察され、上相での活性化合物の飽和、双方の系の下相への化合物の部分的溶解性といった可能性が示された。そこで、次の、抽出工程、すなわちメタノールの下相F002を蒸発させることによって得た固形物を再抽出する二次的抽出を行った。この残存抗細菌化合物を回収するための二次的な抽出系第二二相非混和溶剤系は、酢酸エチルと水で構成した。酢酸エチル相と水相の抗細菌活性を、図9に示す。この第二の二相非混和溶剤系は、第一の二相非混和溶剤系より、極性が高めで、下相主に水には、残存抗細菌活性が認められなかった。本実施例を終えるにあたって、上述のヘプタンメタノール系を代替しうる可能性のある別の2種の非混和溶剤系の評価を行った。すなわち、アボカド種子の乾燥アセトン抽出物の二相分離を行って生理活性分子を高濃度で含む処方を得るための方法として、ヘキサンとメタノールの二相系を用いて、抗細菌化合物をヘキサンの上相から回収した図10。しかも、このヘプタンメタノール二相系では、化合物の下相への移動がより少なく、上相からの化合物の回収ということでは、このヘプタンメタノール二相系の方が効果的であることも立証された。水、塩、エタノールを用いた水性の二相系で、未処理エタノール抽出物から抗細菌化合物を単離する追加試験を行ったところ、所望の化合物が、主にエタノールよりなる上相から回収された。実施例6-アボカド種子のアセトンおよびヘキサン抽出物の抗菌活性に対するケン化の影響アボカドの種子粗アセトン抽出物を、実施例5に記載した手順にしたがって、ヘキサンとメタノールによって二相分離した。各相の分離後、極性化合物の含有量が少なく、ヘキサンを高濃度で含む上相を、ロータリーエバポレータを用いて乾燥状態まで蒸発させた。Broutinらよれば、ケン化は、脂肪族アルコールまたはテルペンアルコール、ステロール、トコフェロール、カロチノイド、およびキサントフィルのように、ケン化不能部分に残存し、水に溶解しない化合物を含む生物活性分画を得る際には、必要な手段だということになっている。しかし、本実施例では、本発明の抗細菌化合物は同じ方法では得られず、本発明の抗細菌化合物が、Broutinらが言及した化合物とは異なる化学的性状を持つものであることが示された。アセトンの未処理抽出物のケン化と、二相分離で生じた上相のヘキサン分画のケン化は、Broutinらにしたがって実施したが、ケン化不能部分を回収し、回収したケン化不能部分からフラン脂質とポリヒドロキシル化脂肪族アルコールを選択的に抽出するために、いくつかの変更を加えた。これとは別に、各抽出物5gを、25mlの12N水酸化カリウムおよび10mlのエタノールと混合し、4時間の静置後、この水溶性-アルコール性混合物を分液漏斗に移し、175mlの水を加え、さらに175mlのジクロロエタンを加え、混合物を30秒間振盪し、二相に分離させ、有機相を回収した。この操作を6回繰り返し、有機相をまとめて水で洗浄し、ジクロロエタンをロータリーエバポレータを用いて乾燥状態まで蒸発させ、得られた乾燥物を秤量した。乾燥物を、最終濃度が25mgmlとなるようアセトンに再溶解し、実施例1に記載の手順にしたがって、抗菌および殺芽胞性活性試験ディスク阻止帯の測定を行い、その際には、クロストリジウムスポロゲネスClostridiumsporogenesを試験微生物として用いた。図11に示すように、未処理アセトン抽出物から抽出されたケン化不能部分のみが、芽胞に対するディスクによる阻止を示し、アセトン抽出物をヘキサンとメタノールで二相分離すると、ケン化不能化合物が分離されることが明らかになった。興味深いことに、これらの粗アセトン抽出物のケン化不能部分は、アルカリ非処理の粗アセトン抽出物より活性が低く、特にこれらの細菌芽胞に対する発育阻止活性において、アルカリ非処理の粗アセトン抽出物より活性が低かった図2。粗アセトン抽出物中のケン化不能化合物は、芽胞より、栄養細胞に対して、より高い特異性を持っていた。ヘキサンメタノールによる二相分離は、ケン化不能物の栄養細胞に対する活性を減少させることから、こうした化合物の一部が、二相分離中にアルコール相に移動した可能性が示された。上側のヘキサン相と下側のメタノール相、つまり粗アセトン抽出物のケン化不部分が分配された先の抗細菌特性を、実施例1に記載した粗アセトン抽出物および粗ヘキサン抽出物の活性と比較すると、抗細菌特性は双方の相とも、有意に低かった。この結果からは、活性化合物がアルカリ処理に対して感受性であるか、所望の化学的性状のいくつかが、ケン化処理とその後の分離処理の間に改変されるか喪失したたことが示される。上記から明らかなように、抗菌および殺芽胞性活性を単離あるいは増加させることを目的としたケン化処理によって、活性のアボカド種子抽出物が得られると考えるべきではない。実施例7-アボカド種子のアセトン抽出物の分配クロマトグラフィー実施例1に記載した手順にしたがって、アボカドの種子の未処理アセトン抽出物を得、乾燥状態まで蒸発させ、その後、実施例5に記載した手順にしたがってヘプタンメタノール二相系で分離した。極性が低めの化合物を含む上側のヘプタンの濃度が高い相をロータリーエバポレータを用いて乾燥状態まで蒸発させ、その後、ヘプタンとメタノールを用いて化合物を分画するために、1000mlのカラムを持つ卓上型高速遠心分配クロマトグラフィーFCPC登録商標に注入した。ヘプタンをポンプでカラムに注入し、静止相として用いた。その後、メタノールを、ポンプでカラムに10ml分の流速で注入した。ローター速度は800rpmに設定した。アボカド種子アセトン抽出物が二相分離されているヘプタンメタノール二相系の上相を蒸発させ、得られた濃縮抽出物を、系が流体力学的平衡に達した後、FCPCに注入した。最初の170分間は、分画を溶出させるためにメタノールを用い、その後移動相としてヘプタンを100分間用いた。カラムの出口からの溶出物を、各試験管あたり10mlに設定されたフラクションコレクターを用いて試験管に採取した。各分画の1mlを、抗細菌および芽胞抑制殺芽胞活性試験用に採取し、SpeedVac遠心器を用いて乾燥状態まで蒸発させ、各分画の固形物の重量を記録し、プールあたりの最終濃度が25mgmlとなるよう、70の連続した分画のプールを形成した。各プールの抗細菌特性を、実施例1に記載の手順にしたがって、クロストリジウムスポロゲネスClostridiumsporogenesの栄養細胞、未処理芽胞、ヒートショック処理芽胞に対して評価した。各分画の残余量をSpeedVac遠心器を用いて乾燥状態となるまで蒸発させ、80°Cに保存し、さらに化学的同定に用いた。図12からわかるように、抗細菌活性は分配係数が、05より低いより詳細にはKdの値が019~035の範囲の分画に存在し、活性化合物は、メタノールよりヘプタンに対して2倍以上可溶であることが示された。また、栄養細胞に対する発育阻害物質が極性の高い分画に分布していることから、これらの分画の栄養細胞に対する活性は、芽胞に対する活性と比較してわずかな違いがあった。FCPCによる抽出物の分離で、上述の実験での純度の低い抽出物の場合と比較して、所望の抗菌活性が増大したことから、抗細菌化合物の濃度を希釈しかねない他の植物由来の化合物を除去する必要性が明確に示された。一部のFCPC分画の抗菌活性は、図2のアボカド種子のヘキサンとアセトンによる粗抽出物のデータと比較して、50以上増加していた。図12の結果からは、図8同様、活性化合物が、メタノール相よりヘプタン相と親和性であることもわかる。活性が最も高い分画の抗細菌活性をさらに調べるうえでは、一晩の培養後の微生物の視認可能な発育を阻止する抗菌物質の最低濃度として定義される最少発育阻止濃度を測定することが重要である。ナイシンと比べると、Kdが03と04のFCPCにより得られた分画は、CスポロゲネスCsporogenesの未処理芽胞およびヒートショック処理芽胞より、栄養細胞に対して低いMICを示した表2。Kdが04の分画は、芽胞の発育に関してナイシンより2倍近く活性が高かったが、Kdが03の分画は、ナイシンより約15倍高活性であった。一方、ヒートショック処理芽胞の場合、ナイシンと、Kdが04の分画の違いは、より不明確であったが、それでも芽胞の発芽に関して、所望の発育阻止特性を持っていた。本実施例からわかるように、上記の条件逆相でFCPCによって分離された同じ抽出物も、ヘプタンを移動相通常相として用いることによって分離でき、クロマトグラフィーによる分離の結果では、抗菌活性に関して同じ傾向が示された。つまり、FCPCによって得られた最初の方の分画は、最後の方の極性が高めの分画より活性が高く、図13で、抗菌活性が分配係数が72まで存在し、メタノールよりヘプタンに対して72倍以上高い可溶性を示した他の化合物は、CスポロゲネスCsporogenesの栄養細胞あるいは芽胞の発育を阻止しなかった。実施例8-CスポロゲネスCsporogenes以外の微生物に対する発育阻止活性を有する分画を得るためのアボカド種子のアセトン抽出物の分配クロマトグラフィー実施例1に記載の手順にしたがって、アボカド種子の未処理アセトン抽出物を得、乾燥状態まで蒸発させ,その後、実施例5に記載の手順にしたがって、ヘプタンメタノール二相系で分離した。極性が低めの化合物を含み、ヘプタンの濃度が高い上相を、ロータリーエバポレータを用いて乾燥状態まで蒸発させ、その後、これを、実施例7に記載の通常相の条件を用いて、高速遠心分配クロマトグラフィーFCPC登録商標に注入した。通常相のFCPCにより得られた分画を、SアウレウスSaureusとBズブチリスBsubtilisの栄養細胞の発育に対する抗菌活性を評価するために用いた。図14からわかるように、CスポロゲネスCsporogenesを阻止する化合物とは異なる、極性の極めて低い化合物が、SアウレウスSaureusとBズブチリスBsubtilisの栄養細胞の発育を阻害している。というのも、ディスクに、分配係数が7より高い分画を接種したところ、実施例7でのCスポロゲネスCsporogenesの阻止についての結果とは対照的に、これらの微生物に対してディスク阻止帯が観察されたからである。表3は、実施例1での粗抽出物の評価、実施例5に記載した分離抽出物の評価、実施例6でのケン化不能分画の評価など、上述の実験での抗菌性の結果をまとめたものである。興味深いことに、表からもわかるように、これらの化合物はSアウレウスSaureusに対しては発育阻止効果を何ら示さず、BズブチリスBsubtilisに対しても、図14に示す濃縮CPC分画にみられるような、より強い発育阻止効果と比べると、きわめて低値のディスク阻止帯を示すにとどまった。実施例9-抗菌活性の安定性に対する高圧高温の影響実施例1に記載の手順にしたがってアボカド種子の粗アセトン抽出物を得、乾燥状態まで蒸発させた。その後、実施例5の記載にしたがって、アセトン抽出アボカド固形分を二相ヘキサンメタノール系で二相分離し、さらに、実施例5に記載されているように第一の分配系の下相メタノール相に存在する活性化合物を完全に回収するために、第二の酢酸エチル水の分配系を使用した。ヘキサンと酢酸エチルの相は別個に回収し、ロータリーエバポレータを用いて乾燥状態まで蒸発させた。その後、双方の相をバイアルに満たし、それぞれ、300MPaおよび600MPaの静水力学的圧力処理に、3分間および6分間暴露した。高圧処理後の抽出物の抗細菌特性に有意な違いは認められず、観察した抗菌特性の原因化合物は、HHP処理に対して安定であることが示された。活性化合物の熱安定性について、25~100°Cの範囲の温度で60分間の試験を行った。CスポロゲネスCsporogenesの栄養細胞の発育に対して活性を持つ化合物は、未処理芽胞の発育に対する阻止活性をもつ化合物より、熱処理に対する感受性が低かった。図15からわかるように、栄養細胞に対する発育阻止特性は、酢酸エチル抽出物とヘキサン抽出物を100°Cで60分間処理することにより、25°Cのままとした非加熱対照抽出物の発育阻止活性と比べて、それぞれ20および235減少した。ヒートショック処理芽胞は、熱処理粗ヘキサン抽出物および粗酢酸エチル抽出物の作用に対して、抵抗性がより高かった。ヒートショック処理芽胞に対する発育阻止特性は、抽出物の100°Cで60分間の暴露後では、25°Cのままとした対照抽出物の発育阻止活性と比べて50減少していた。実施例10-生物活性分画中の主要化合物の特定逆相高速遠心分配クロマトグラフィーを利用することによって得られた、ディスク阻止帯が最大で、しかもKdが019~035の分画をまとめて混合し、実施例7に記載したような活性分画のプールを形成した。まず、分画を1923mgmlの同濃度に調整し、それぞれから同容積を分取し、エタノールで50mgmlの最終濃度に調整した。図17に示されている通り、活性プールに含まれる分画のクロマトグラフ特性は、Kdの増加とともに連続的に変化する。個々の分画の一部を分取して蒸発させ、HPLC等級のメタノールで1mgmlに調整し、2μlを注入した。使用カラムは、ZorbaxExtandedC18カラムで、移動相は、A相として水100、B相としてメタノール100を用いた。溶剤勾配は、表4に示すものを使用し、038ml分の流量と、平衡後の時間6分間で供給した。検出装置は、波長220nmに設定した。アボカド由来の抗菌化合物の活性プールより得られた典型的なクロマトグラフを図17に示す。クロマトグラム中に示した数字は、220nmにおいて共通に吸光のみられるピークを表し、化合物1~11と名付けてある。各化合物の質量と分子式についての情報は表5に示した通りである。これらの化合物のいくつかは,アボカド組織での存在がすでに報告されているが、いくつかの化合物は、発明者らが抗菌分画中で発見したものであり、新規化合物として、ここに開示する。ほとんどの生物活性分画で、化合物1、2、4、11などは、化合物7および9と比べて、濃度が低かった。実施例11-抗菌化合物を高濃度で含む分画の芽胞抑制活性および殺芽胞活性の評価実施例10に記載した活性分画のプールが芽胞抑制または殺芽胞性活性を持っていることを立証するためには、最少発育阻止濃度と最小殺菌濃度を決定することが必要であった。一般論としては、最少発育阻止濃度は、一晩培養後に微生物の視認可能な発育が阻止される、抗菌物質の最低濃度と定義される。一方、最小殺菌濃度は、抗生物質も抗菌物質も含まない新鮮寒天培地での継代培養後に微生物の発育が阻害される、抗菌物質の最低濃度のことである。活性分画のプールを0005~25mgmlの範囲の濃度で、対照としてナイシンを用いて分析した。表6に示すように、活性分画プールの最少発育阻止濃度は、ナイシンの最少発育阻止濃度のほぼ110であり、活性分画プールは、CスポロゲネスCsporogenesの芽胞の発育阻害剤として、ナイシンよりすぐれていることがわかる。Smolaによれば、MBCMIC比が4以下の場合、その化合物は殺芽胞物質と見なすことができ、MBCMICが4より大きい場合、その化合物は単に芽胞抑制物質と見なされる。本実施例では、ナイシンとアボカド活性分画プールの双方とも、殺芽胞効果を示した。実施例12-生物活性分画から単離された化合物の抗菌活性本実施例では、実施例10に記載したのと同じ単離化合物の抗菌活性を、CスポロゲネスCsporogenesの栄養細胞とヒートショック処理芽胞、ならびにSアウレウスSaureus、PアエウロギノサPaeuroginosa、大腸菌Ecoli、およびBズブチリスBsubtilisの栄養細胞の発育に対して、実施例1に記載した手順にしたがって、05mgmlの濃度で調べた。表7にも示されているように、化合物6ピーク6およびペルセノンBピーク9Aは、高めの抗菌特性を示し、ペルセノンAピーク7がそれに続いた。また、既知の抗菌物質であるナイシンは、100倍高い濃度で試験に使用しているにもかかわらず、全生物活性化合物のうち、ペルシンピーク9Bのみがナイシンより活性が低かった。ペルシンは、菌の芽胞の発芽を阻止しうることが報告されており、本実験でも、ペルシンの活性は低めであることが示唆されているので、他の生物活性化合物は、菌の芽胞に対してより高い活性を持つはずである。意外なことに、CスポロゲネスCsporogenesの栄養細胞およびヒートショック処理芽胞に対して高い活性を示すすべての化合物は、C5C6二重結合を持っていたことを報告しておく。また、ペルシンとペルセノンAの構造を比較すると、唯一の違いは、ペルシンでは、C5C6二重結合を欠いていることであり、本実施例では、抗菌活性が375低くなることが示された。また、ペルセノンBと化合物6の構造上の唯一の違いは、後者がC16C17二重結合も持っていることであったが、これらの化合物の発育阻止活性は同じであった。この観察結果から、C5C6二重結合が、本実施例でも記載したように化合物の抗菌活性を向上させるうえで望ましい構造上の特徴であること、また、C16C17二重結合は化合物3の唯一の不飽和であり、化合物3の活性の方が、不飽和を2箇所含むのにC16C17には不飽和のないペルシンより高かったことから、C16C17二重結合も公的な構造上の特徴であるという知見も支持された。CスポロゲネスCsporogenesに対する抗細菌化合物の大半は、SアウレウスSaureus、PアエウロギノサPaeuroginosa、大腸菌Ecoliに対する発育阻止活性を示さなかったものの表9、化合物6は、BズブチリスBsubtillisの発育に対して最大の発育阻止活性も示し、ペルセノンAがその次であった。化合物6は、アボカド構成成分として報告されていない新たに見いだされた化合物であるため、この化合物に関しては、抗菌活性だけでなく、他の生物活性に関しても報告がない。ペルセノンAは、抗真菌活性については以前に報告があるものの、表7の結果によると、その抗菌活性は、芽胞形成性のグラム陽性菌に特異的であるようである。実施例10に記載したようにして得られ、実施例10でCスポロゲネスCsporogenesに対する抗細菌特性を示した活性分画のプールは、本実施例では、芽胞形成性のBズブチリスBsubtilisに対する発育阻止活性を示しただけであった。化合物6、ペルセノンB、ペルセノンAの最少発育阻止濃度を、実施例11に記載した手順にしたがって、CスポロゲネスCsporogenesのヒートショック処理芽胞の発芽に対して決定した。表10からわかるように、これらの3化合物の最少発育阻止濃度の値は、ナイシンより15~30倍も低く、細菌芽胞への効果が示された。活性分画のプールについては、最少発育阻止濃度は195μgmlであったのが、単離すると、ペルセノンAとペルセノンBの最少発育阻止濃度は78μgmlに下がったものの、プール内のペルセノンBの抗菌特性は、この化合物の含有量μgが少なく、また他の生物活性分子と組み合わさると、化合物の活性があがるようであることから、単離した際の低めの最少発育阻止濃度と対応しなかった。興味深いことに、単離化合物は、CスポロゲネスCsporogenesに対する芽胞抑制活性のみを示し、活性分画の分画で観察されたような殺芽胞生物活性は示さなかった。実施例13-リステリアモノサイトゲネスListeriamonocytogenesを制御するための、アボカド種子抽出物の抗細菌活性と低温保管との組みあわせ実施例10に記載した活性分画のプールは、冷蔵条件でも発育しうるグラム陽性菌、たとえばリステリアモノキトゲネスListeriamonocytogenesの低温ストレスを与えた栄養細胞に対しても、抗細菌作用を示す。リステリアモノキトゲネスListeriamonocytogenesにとっての最適発育温度である37°Cでは、生物活性のアセトゲニンが濃縮されたアボカドプール抽出物は、調べた生物の栄養細胞の発育阻止に対して、特に有用ではなかった。しかし、予想外にも、本発明者らは、冷蔵条件では、アボカド種子のプール抽出物が、リステリアモノキトゲネスListeriamonocytogenesの発育を阻止するうえで特に有用であることを見いだした。さらに、表12からわかるように、本発明で単離したアボカドのアセトゲニンの抗菌活性を、リステリアモノキトゲネスListeriamonocytogenesの栄養細胞の発育について試験したところ、C5とC6の間に二重結合があるという所望の特徴を示す化合物は、冷蔵条件下で保管される食糧品および生物学マトリックス中のリステリアモノキトゲネスListeriamonocytogenesのコントロールに使用できた。実施例14-濃縮アボカド抽出物中の抗菌化合物の定量表7実施例10に記載した活性分画のプールに含まれる抗細菌化合物の濃度を図18に示す。ペルセノンAが活性分画のプールの乾燥重量の3632を占め、ペルセノンBは020、化合物6は最低量であった。混合物中の他の成分は、ペルセノンAの発育阻止活性に影響せず、したがって、これ以上の精製は必要ないようである。表13からは、新鮮なアボカド果肉および種子には、CスポロゲネスCsporogenesに対する生物活性化合物の大半が極めて似た濃度で含まれており、そのうちペルセノンAが最も濃縮されていることがわかる。本実施例の情報は、もし生物活性化合物が果肉にも存在するのであれば、そうした生物活性化合物は果実の他の部分からも容易に得られることから、大変重要である。本実施例は、抗細菌特性を発揮するのに必要な濃度の果実を食べる際には、ヒトは生物活性分子に暴露され、したがって、この果実が食糧品、医学、化粧品技術において商業的に価値がある可能性を示している。以上では、本発明の各種の実施形態について記載してきたが、以上の記載によって記述した本発明については、本発明の精神や範囲から逸脱することなく、数多くの自明な改変を行うことができるため、以上の記載で説明した特定の詳細に限定されるものではない。"