カブトガニの血球抽出物であるALと所定の生物由来の生理活性物質を含む試料の混和液を生成し、該混和液を攪拌しつつ、該混和液におけるALと前記生理活性物質との反応に起因する蛋白質の凝集またはゲル化を検出することで、前記試料中の前記生理活性物質を検出しまたは前記生理活性物質の濃度を測定する、生物由来の生理活性物質の測定方法であって、前記攪拌をする際には、前記混和液に、所定の界面活性剤を添加することで、前記混和液における前記生理活性物質に由来しない凝集またはゲル化を抑制することを特徴とする生物由来の生理活性物質の測定方法。前記所定の界面活性剤は、非イオン系界面活性剤であることを特徴とする請求項1に記載の生物由来の生理活性物質の測定方法。前記所定の界面活性剤は、Tween、TritonX、Pluronic、ポリオキシエチレンソルビタンモノラウレート、ポリオキシエチレンソルビタンモノパルミテート、ポリオキシエチレンソルビタンモノステアレート、ポリオキシエチレンソルビタンモノオレエート、ポリオキシエチレンソルビタントリオレエート、ポリオキシエチレン-p-イソオクチルフェノール、ポリエチレンオキシド/ポリプロピレンオキシドブロックポリマー、しょ糖脂肪酸エステルソルビタン脂肪酸エステル、ポリオキシエチレンソルビタン脂肪酸エステル、脂肪酸アルカノールアミド、ポリオキシエチレンアルキルエーテル、ポリオキシエチレンアルキルフェニルエーテルのうちの一種、あるいは二種以上を含むことを特徴とする請求項1に記載の生物由来の生理活性物質の測定方法。前記混和液に、所定の界面活性剤を添加する際の最終濃度は、0.0001以上10以下であることを特徴とする請求項1から3のいずれか一項に記載の生物由来の生理活性物質の測定方法。前記生物由来の生理活性物質は、エンドトキシンまたはβ-D-グルカンであることを特徴とする請求項1から4のいずれか一項に記載の生物由来の生理活性物質の測定方法。カブトガニの血球抽出物であるALを含み、所定の生物由来の生理活性物質を含む試料との混和液を生成し、該混和液を攪拌しつつ、前記生理活性物質に起因する蛋白質の凝集またはゲル化を検出することで、前記試料中の前記生理活性物質を検出しまたは前記生理活性物質の濃度を測定するための、生物由来の生理活性物質の測定用試薬であって、所定の界面活性剤が添加され、前記混和液における前記生理活性物質に由来しない凝集またはゲル化を抑制可能としたこと特徴とする生物由来の生理活性物質の測定用試薬。前記所定の界面活性剤は、非イオン系界面活性剤であることを特徴とする請求項6に記載の生物由来の生理活性物質の測定用試薬。前記所定の界面活性剤は、Tween、TritonX、Pluronic、ポリオキシエチレンソルビタンモノラウレート、ポリオキシエチレンソルビタンモノパルミテート、ポリオキシエチレンソルビタンモノステアレート、ポリオキシエチレンソルビタンモノオレエート、ポリオキシエチレンソルビタントリオレエート、ポリオキシエチレン-p-イソオクチルフェノール、ポリエチレンオキシド/ポリプロピレンオキシドブロックポリマー、しょ糖脂肪酸エステルソルビタン脂肪酸エステル、ポリオキシエチレンソルビタン脂肪酸エステル、脂肪酸アルカノールアミド、ポリオキシエチレンアルキルエーテル、ポリオキシエチレンアルキルフェニルエーテルのうちの一種、あるいは二種以上を含むことを特徴とする請求項6に記載の生物由来の生理活性物質の測定用試薬。所定の生物由来の生理活性物質を含む試料とカブトガニの血球抽出物であるALとの混和液を光の入射が可能な状態に保持するとともに該混和液における反応を進行させる混和液保持手段と、前記混和液保持手段中の前記混和液を攪拌する攪拌手段と、前記混和液保持手段中の混和液に光を入射する光入射手段と、前記入射光の前記混和液における透過光または散乱光を受光し電気信号に変換する受光手段と、前記受光手段において変換された電気信号から前記試料中における前記生理活性物質とALとの反応開始時刻を判定する判定手段と、予め定められた、前記反応開始時刻と前記生理活性物質の濃度との関係より、前記試料中の前記生理活性物質の存在または濃度を導出する導出手段と、を備える生物由来の生理活性物質の測定装置であって、前記攪拌手段によって、前記混和液を攪拌する際に、所定の界面活性剤を前記混和液に添加する界面活性剤添加手段をさらに備えることを特徴とする生物由来の生理活性物質の測定装置。前記界面活性剤添加手段によって添加される界面活性剤は、非イオン系界面活性剤であることを特徴とする請求項9に記載の生物由来の生理活性物質の測定装置。前記界面活性剤添加手段によって添加される界面活性剤は、Tween、TritonX、Pluronic、ポリオキシエチレンソルビタンモノラウレート、ポリオキシエチレンソルビタンモノパルミテート、ポリオキシエチレンソルビタンモノステアレート、ポリオキシエチレンソルビタンモノオレエート、ポリオキシエチレンソルビタントリオレエート、ポリオキシエチレン-p-イソオクチルフェノール、ポリエチレンオキシド/ポリプロピレンオキシドブロックポリマー、しょ糖脂肪酸エステルソルビタン脂肪酸エステル、ポリオキシエチレンソルビタン脂肪酸エステル、脂肪酸アルカノールアミド、ポリオキシエチレンアルキルエーテル、ポリオキシエチレンアルキルフェニルエーテルのうちの一種、あるいは二種以上を含むことを特徴とする請求項9に記載の生物由来の生理活性物質の測定装置。前記界面活性剤添加手段によって、前記混和液に所定の界面活性剤を添加する際の最終濃度は、0.0001以上10以下であることを特徴とする請求項9から11のいずれか一項に記載の生物由来の生理活性物質の測定装置。前記生物由来の生理活性物質は、エンドトキシンまたはβ-D-グルカンであることを特徴とする請求項9から12のいずれか一項に記載の生物由来の生理活性物質の測定装置。本発明の目的とするところは、カブトガニの血球抽出物であるALと生物由来の生理活性物質との反応に起因する凝集あるいはゲル化を光学的に測定する、生物由来の生理活性物質の測定法において、より高い測定精度を得るための技術を提供することである。より詳しくは、攪拌比濁法、光散乱法、あるいはAL結合ビーズ法によって試料中の生物由来の生理活性物質の濃度を測定する場合に、AL試薬と試料の混和液の攪拌に起因して生じる、前記生理活性物質に由来しない凝集またはゲル化を抑制することによって、上記測定の測定精度を向上させることを目的とする。本発明は、AL試薬と生物由来の生理活性物質を含む試料とを混和させ、混和液を攪拌しつつ、混和液におけるALと生物由来の生理活性物質との反応に起因する蛋白質の凝集またはゲル化を検出する際に、界面活性剤を混和液に添加することで、該混和液におけるALと生物由来の生理活性物質との反応に起因しない、蛋白質の凝集またはゲル化を抑制することを最大の特徴とする。より詳しくは、カブトガニの血球抽出物であるALと所定の生物由来の生理活性物質を含む試料の混和液を生成し、該混和液を攪拌しつつ、該混和液におけるALと前記生理活性物質との反応に起因する蛋白質の凝集またはゲル化を検出することで、前記試料中の前記生理活性物質を検出しまたは前記生理活性物質の濃度を測定する、生物由来の生理活性物質の測定方法であって、前記攪拌をする際には、前記混和液に、所定の界面活性剤を添加することで、前記混和液における前記生理活性物質に由来しない凝集またはゲル化を抑制することを特徴とする。ここで、混和液の攪拌によって試料とAL試薬との反応曲線が変化する現象の原因が以下のものであることが明確になってきた。すなわち、生物由来の生理活性物質の含有量が非常に少ない試料を測定する場合は、攪拌によって、1AL試薬およびまたは試料中に含まれる蛋白質同士が凝集し、あるいは、2攪拌に伴うずり応力物理的刺激によってプロクロッティングエンザイムが切断活性化され、クロッティングエンザイムに変化し、生物由来の生理活性物質に由来しない凝集物が生成されることが見出された。この生物由来の生理活性物質に由来しない凝集は、攪拌比濁法及び光散乱法の両方の方法においてゲル粒子の発生と同様の信号として検出されてしまうため、反応曲線タイムコースの形状に影響を及ぼし、測定精度が低下し、誤計測をもたらす危険性があった。これに対し、発明者らの鋭意研究により、試料とAL試薬の混和時に、界面活性剤を添加することで上記の生物由来の生理活性物質に由来しない凝集またはゲル化の誘発を抑制できることが見出された。特に、この界面活性剤の添加により、AL試薬およびまたは試料中に含まれる蛋白質同士の凝集を抑制できることが見出された。さらに、この界面活性剤を試料に添加しても、生物由来の生理活性物質に由来する凝集またはゲル化の測定に影響がないことが実験によって確認された。本発明によれば、特に生物由来の生理活性物質の含有量の少ない試料とAL試薬との混和液における凝集またはゲル化を攪拌しつつ測定する場合に、攪拌による、生物由来の生理活性物質に起因しない凝集またはゲル化を抑制することができる。特に、界面活性剤によってAL試薬およびまたは試料中に含まれる蛋白質同士の凝集を抑制できることから、熱処理済みアルブミンでは効果が期待できない場合でも、攪拌による、生物由来の生理活性物質に起因しない凝集またはゲル化を抑制することができる。その結果、生物由来の生理活性物質の測定における精度を向上させることができる。また、本発明においては、前記界面活性剤は、陰イオン系界面活性剤、例えば、純石けん分脂肪酸ナトリウム、純石けん分脂肪酸カリウム、アルファスルホ脂肪酸エステルナトリウム、直鎖アルキルベンゼンスルホン酸ナトリウム、アルキル硫酸エステルナトリウム、アルキルエーテル硫酸エステルナトリウム、アルファオレフィンスルホン酸ナトリウム、アルキルスルホン酸ナトリウムでもよい。また、非イオン系界面活性剤、例えば、Tween商品名、TritonX商品名、Pluronic商品名、ポリオキシエチレンソルビタンモノラウレート、ポリオキシエチレンソルビタンモノパルミテート、ポリオキシエチレンソルビタンモノステアレート、ポリオキシエチレンソルビタンモノオレエート、ポリオキシエチレンソルビタントリオレエート、ポリオキシエチレン-p-イソオクチルフェノール、ポリエチレンオキシド/ポリプロピレンオキシドブロックポリマー、しょ糖脂肪酸エステルソルビタン脂肪酸エステル、ポリオキシエチレンソルビタン脂肪酸エステル、脂肪酸アルカノールアミド、ポリオキシエチレンアルキルエーテル、ポリオキシエチレンアルキルフェニルエーテルでもよい。また、非イオン系界面活性剤に、シリコーンオイルや植物油を乳化したエマルジョン型消泡剤でもよい。また、両性イオン系界面活性剤、例えば、アルキルアミノ脂肪酸ナトリウム、アルキルベタイン、アルキルアミンオキシドでもよい。また、陽イオン系界面活性剤、例えば、アルキルトリメチルアンモニウム塩、ジアルキルトリメチルアンモニウム塩でもよい。これらの界面活性剤は、試料とAL試薬の混和時に添加されることにより、生物由来の生理活性物質に由来しない凝集またはゲル化の誘発を抑制できることが確認されているため、より確実に、攪拌による、生物由来の生理活性物質に起因しない凝集またはゲル化を抑制することができる。また、本発明においては、前記混和液に、所定の界面活性剤を添加する際の最終濃度は、0.0001以上10以下としてもよい。これによって、より効果的に、攪拌による生物由来の生理活性物質に起因しない凝集またはゲル化を抑制することができる。なお、上記最終濃度は、望ましくは、0.0005以上5以下がよい。さらに望ましくは、0.005以上0.5以下がよい。なお、本発明においては、攪拌による、生物由来の生理活性物質に起因しない凝集またはゲル化を抑制するために、本発明である界面活性剤の添加と合わせて、熱処理済みアルブミンの添加を併用してもよい。また、本発明においては、前記生物由来の生理活性物質は、エンドトキシンまたはβ-D-グルカンであってもよい。そうすれば、最も代表的な発熱性物質であるエンドトキシンの検出または濃度測定がより正確に行なえ、エンドトキシンに汚染された輸液、注射薬剤、血液などが人体に入り、副作用が惹起されることを抑制できる。同様に、β-D-グルカンの検出または濃度測定がより正確に行なえ、カンジダやアスペルギルス、クリプトコッカスのような一般の臨床でよく見られる真菌のみならず、稀な真菌も含む広範囲で真菌感染症のスクリーニングをより正確に行なうことが可能となる。また、本発明は、カブトガニの血球抽出物であるALを含み、所定の生物由来の生理活性物質を含む試料との混和液を生成し、該混和液を攪拌しつつ、前記生理活性物質に起因する蛋白質の凝集またはゲル化を検出することで、前記試料中の前記生理活性物質を検出しまたは前記生理活性物質の濃度を測定するための、生物由来の生理活性物質の測定用試薬であって、所定の界面活性剤が添加され、前記混和液における前記生理活性物質に由来しない凝集またはゲル化を抑制可能としたこと特徴とする生物由来の生理活性物質の測定用試薬であってもよい。また、その場合は、前記所定の界面活性剤は、陰イオン系界面活性剤、例えば、純石けん分脂肪酸ナトリウム、純石けん分脂肪酸カリウム、アルファスルホ脂肪酸エステルナトリウム、直鎖アルキルベンゼンスルホン酸ナトリウム、アルキル硫酸エステルナトリウム、アルキルエーテル硫酸エステルナトリウム、アルファオレフィンスルホン酸ナトリウム、アルキルスルホン酸ナトリウムでもよい。また、非イオン系界面活性剤、例えば、Tween商品名、TritonX商品名、Pluronic商品名、ポリオキシエチレンソルビタンモノラウレート、ポリオキシエチレンソルビタンモノパルミテート、ポリオキシエチレンソルビタンモノステアレート、ポリオキシエチレンソルビタンモノオレエート、ポリオキシエチレンソルビタントリオレエート、ポリオキシエチレン-p-イソオクチルフェノール、ポリエチレンオキシド/ポリプロピレンオキシドブロックポリマー、しょ糖脂肪酸エステルソルビタン脂肪酸エステル、ポリオキシエチレンソルビタン脂肪酸エステル、脂肪酸アルカノールアミド、ポリオキシエチレンアルキルエーテル、ポリオキシエチレンアルキルフェニルエーテルでもよい。また、非イオン系界面活性剤に、シリコーンオイルや植物油を乳化したエマルジョン型消泡剤でもよい。また、両性イオン系界面活性剤、例えば、アルキルアミノ脂肪酸ナトリウム、アルキルベタイン、アルキルアミンオキシドでもよい。また、陽イオン系界面活性剤、例えば、アルキルトリメチルアンモニウム塩、ジアルキルトリメチルアンモニウム塩でもよい。また、本発明は、所定の生物由来の生理活性物質を含む試料とカブトガニの血球抽出物であるALとの混和液を光の入射が可能な状態に保持するとともに該混和液における反応を進行させる混和液保持手段と、前記混和液保持手段中の前記混和液を攪拌する攪拌手段と、前記混和液保持手段中の混和液に光を入射する光入射手段と、前記入射光の前記混和液における透過光または散乱光を受光し電気信号に変換する受光手段と、前記受光手段において変換された電気信号から前記試料中における前記生理活性物質とALとの反応開始時刻を判定する判定手段と、予め定められた、前記反応開始時刻と前記生理活性物質の濃度との関係より、前記試料中の前記生理活性物質の存在または濃度を導出する導出手段と、を備える生物由来の生理活性物質の測定装置であって、前記攪拌手段によって、前記混和液を攪拌する際に、所定の界面活性剤を前記混和液に添加する界面活性剤添加手段をさらに備えることを特徴とする生物由来の生理活性物質の測定装置であってもよい。この装置によれば、試料とAL試薬との混和液を攪拌する際に、自動的に、所定の界面活性剤を前記混和液に添加することができ、より簡単に、該混和液における前記生理活性物質に由来しない、蛋白質の凝集またはゲル化を抑制することができる。この装置においても、界面活性剤添加手段によって添加される界面活性剤は、陰イオン系界面活性剤、例えば、純石けん分脂肪酸ナトリウム、純石けん分脂肪酸カリウム、アルファスルホ脂肪酸エステルナトリウム、直鎖アルキルベンゼンスルホン酸ナトリウム、アルキル硫酸エステルナトリウム、アルキルエーテル硫酸エステルナトリウム、アルファオレフィンスルホン酸ナトリウム、アルキルスルホン酸ナトリウムでもよい。また、非イオン系界面活性剤、例えば、Tween商品名、TritonX商品名、Pluronic商品名、ポリオキシエチレンソルビタンモノラウレート、ポリオキシエチレンソルビタンモノパルミテート、ポリオキシエチレンソルビタンモノステアレート、ポリオキシエチレンソルビタンモノオレエート、ポリオキシエチレンソルビタントリオレエート、ポリオキシエチレン-p-イソオクチルフェノール、ポリエチレンオキシド/ポリプロピレンオキシドブロックポリマー、しょ糖脂肪酸エステルソルビタン脂肪酸エステル、ポリオキシエチレンソルビタン脂肪酸エステル、脂肪酸アルカノールアミド、ポリオキシエチレンアルキルエーテル、ポリオキシエチレンアルキルフェニルエーテルでもよい。また、非イオン系界面活性剤に、シリコーンオイルや植物油を乳化したエマルジョン型消泡剤でもよい。また、両性イオン系界面活性剤、例えば、アルキルアミノ脂肪酸ナトリウム、アルキルベタイン、アルキルアミンオキシドでもよい。また、陽イオン系界面活性剤、例えば、アルキルトリメチルアンモニウム塩、ジアルキルトリメチルアンモニウム塩でもよい。また、混和液に、所定の界面活性剤を添加する際の最終濃度は、0.0001以上10以下とするとよい。望ましくは、0.0005以上5以下がよい。さらに望ましくは、0.005以上0.5以下がよい。さらに、生物由来の生理活性物質は、エンドトキシンまたはβ-D-グルカンとしてもよい。なお、上記した本発明の課題を解決する手段については、可能なかぎり組み合わせて用いることができる。本発明にあっては、攪拌比濁法、光散乱法、あるいはAL結合ビーズ法によって試料中の生物由来の生理活性物質の濃度を測定する場合に、混和液の攪拌に起因して生じる、前記生理活性物質に由来しない凝集またはゲル化を抑制することによって、上記測定の測定精度を向上させることができる。<実施例1>ALとエンドトキシンとが反応してゲルが生成される過程以下、リムルス反応ともいう。はよく調べられている。すなわち、図1に示すように、エンドトキシンがAL中のセリンプロテアーゼであるC因子に結合すると、C因子は活性化して活性型C因子となり、活性型C因子はAL中の別のセリンプロテアーゼであるB因子を加水分解して活性化させ活性化B因子とする。この活性化B因子は直ちにAL中の凝固酵素の前駆体を加水分解して凝固酵素とし、さらに、この凝固酵素がAL中のコアギュロゲンを加水分解してコアギュリンを生成する。そして、生成したコアギュリンが互いに会合して不溶性のゲルをさらに生成し、AL全体がこれに巻き込まれてゲル化すると考えられている。また、同様にβ-D-グルカンがAL中のG因子に結合すると、G因子は活性化して活性型G因子となる、活性型G因子はAL中の凝固酵素の前駆体を加水分解して凝固酵素とする。その結果、エンドトキシンとALとの反応と同様、コアギュリンが生成され、生成したコアギュリンが互いに会合して不溶性のゲルをさらに生成する。この一連の反応は哺乳動物に見られるクリスマス因子やトロンビンなどのセリンプロテアーゼを介したフィブリンゲルの生成過程に類似している。このような酵素カスケード反応はごく少量の活性化因子であっても、その後のカスケードを連鎖して活性化していくために非常に強い増幅作用を有する。従って、ALを用いた所定生理活性物質の測定法によれば、サブピコグラム/mLオーダーのきわめて微量の所定生理活性物質を検出することが可能になっている。エンドトキシンならびにβ―D-グルカンを定量するための試薬としては、カブトガニの血球抽出物ALAmoebocytelysateを原料としたリムルス試薬、ならびに、リムルス試薬に凝固酵素により加水分解され着色強度、蛍光強度、または化学発光強度のいずれかが増加する合成基質を添加した試薬が使用される。また、リムルス試薬中のC因子の組換え体リコンビナントC因子とその合成基質着色、蛍光、化学発光かの手段は問わないの混合試薬などが使用される場合もある。さらに、リムルス試薬中のG因子の組換え体リコンビナントG因子とその合成基質着色、蛍光、化学発光かの手段は問わないの混合試薬などを使用することも可能である。エンドトキシンやβ-D-グルカンなどの所定生理活性物質とALとの反応に起因して変化する物理量は、試薬の種類に応じて選択すればよい。試料の光透過率または、濁度、散乱光強度、光散乱粒子数、吸光度、蛍光強度、化学発光強度などの光学的な物理量の変化を検出するか、試料のゲル化に伴う試料の粘性、電気伝導度などの物理量の変化を検出すればよい。これらの物理量の検出には、濁度計、吸光光度計、光散乱光度計、レーザー光散乱粒子計測計、蛍光光度計、フォトンカウンターなどの光学機器、ならびに、これらを応用した専用の測定装置を使用することができる。また、粘度計、電気伝導率計やこれらを応用した専用の測定装置を使用しても構わない。所定生理活性物質を定量する測定法としては前述のように攪拌比濁法ならびに光散乱法が挙げられる。図1に示すように、これらの測定法はALの酵素カスケード反応によって生成されるコアギュリンの会合物を前者は試料の濁りとして、後者は系内に生成されるゲルの微粒子の数として検出することで、高感度な測定を可能にしている。次に、本実施例において散乱光を取得するために使用した光散乱粒子計測装置について説明する。なお、以下の説明においては、所定生理活性物質としてエンドトキシンを例にとって説明するが、以下の説明はβ-D-グルカンなど他の生理活性物質にも適用可能である。図2には、本実施例におけるエンドトキシンの測定装置としての光散乱粒子計測装置1の概略構成を示す。光散乱粒子計測装置1に使用される光源2にはレーザー光源が用いられているが、他に、超高輝度LEDなどを用いてもよい。光源2から照射された光は、入射光学系3で絞られ、試料セル4に入射する。この試料セル4にはエンドトキシンの測定をすべき試料とAL試薬の混和液が保持されている。試料セル4に入射した光は、混和液中の粒子コアギュロゲンモノマー、ならびに、コアギュロゲンオリゴマーなどの測定対象で散乱される。試料セル4の、入射光軸の側方には出射光学系5が配置されている。また、出射光学系5の光軸の延長上には、試料セル4内の混和液中の粒子で散乱され出射光学系5で絞られた散乱光を受光し電気信号に変換する受光素子6が配置されている。受光素子6には、受光素子6で光電変換された電気信号を増幅する増幅回路7、増幅回路7によって増幅された電気信号からノイズを除去するためのフィルタ8、ノイズが除去された後の電気信号のピーク数からゲル粒子数を演算し、さらにゲル化検出時間を判定してエンドトキシンの濃度を導出する演算装置9及び、結果を表示する表示器10が電気的に接続されている。また、試料セル4には、外部から電磁力を及ぼすことで回転し、試料としての混和液を攪拌する攪拌子11が備えられており、試料セル4の外部には、攪拌器12が備えられている。これらにより、攪拌の有無及び攪拌速度の調整が可能となっている。ここで、試料セル4は本実施例の混和液保持手段に相当する。光源2及び入射光学系3は光入射手段に相当する。攪拌子11及び攪拌器12は攪拌手段に相当する。出射光学系5及び受光素子6は受光手段に相当する。演算装置9は判定手段及び導出手段に相当する。上記の光散乱粒子計測装置1においては、リムルス反応の最終段階であるコアギュリンゲル粒子の出現時間ゲル化検出時間=ゲル化時間を測定し、エンドトキシン濃度とゲル化検出時間の間に成立する検量関係を用いて検体中のエンドトキシン濃度を算出する。図3に、エンドトキシン濃度とゲル化検出時間との関係及び検量線を示す。なお、図3においては、AL試薬100μLと10~0.0001EU/mLのエンドトキシンを含む試料100μLを混和した混和液を測定に用いた。試料中のエンドトキシン濃度が10~0.01EU/mLのとき、試料中のエンドトキシン濃度が低い程、ゲル化検出時間が明確に長くなる検量関係を示したが、0.01EU/mL以下では、エンドトキシン濃度によらず、ゲル化検出時間が14~30分以内に観測された。結果として、0.01EU/mL以下のエンドトキシンを正確に測定することが困難であった。また検量線の直線性は、相関係数が0.974となり充分とは言えなかった。これは、攪拌子11及び攪拌器12による攪拌の刺激によって蛋白質が変性し不溶性の凝集体が生成し、このエンドトキシンに由来しない凝集物ゲル粒子が生成したためである。従って、0.01EU/mL以下の低濃度のエンドトキシンを正確に測定するには、上記のエンドトキシンに由来しない凝集を抑制する必要がある。これに対し、発明者らの鋭意研究により、Tweenなどの界面活性剤の添加によってエンドトキシンに由来しない凝集を抑制できることが分かった。本実施例においては、界面活性剤としてTween20およびTritonX100を使用し、これによるエンドトキシンに由来しない凝集の抑制効果を調べた。なお、Tween20およびTritonX100は、いずれもエンドトキシン含有量が少なく、そのまま用いることができたが、エンドトキシンを多く含む場合は予めオートクレーブ滅菌処理により、エンドトキシンを不活化させておけばよい。上記の測定の結果を以下に説明する。AL試薬100μLとTween200、0.001、0.01、0.1、1100μLを混和した混和液すなわちTween20の最終濃度は0、0.0005、0.005、0.05、0.5となるを測定に供したときの反応曲線を図4に示す。図4の横軸は反応時間、縦軸はゲル粒子数である。Tween20が0すなわち未添加および0.0005のとき、ゲル粒子数は反応開始直後から時間の経過とともに急峻に増加し、80分~100分程度をピークとして再び減少している。これは、反応直後から、攪拌子11及び攪拌器12による攪拌の刺激によって蛋白質が変性し不溶性の凝集体が生成し、このエンドトキシンに由来しない凝集物ゲル粒子を計測しているためと考えられる。これに対し、Tween20が0.005以上含まれるとき、反応開始直後のゲル粒子数の急峻な増加が抑制され、測定されるゲル粒子数は安定的に増加していることが分かる。上記より、界面活性剤がTweenまたは同等品であるときは、最終濃度が0.005以上0.5以下であれば、確実に、反応開始直後のゲル粒子数の急峻な増加が抑制される効果が期待できる。エンドトキシンに由来しない凝集物の生成が、AL試薬の種類やメーカーおよびロットによって異なることを考慮すると、一般的には、界面活性剤が0.0001以上10以下であれば、程度の差はあるとしても、反応開始直後のゲル粒子数の急峻な増加が抑制される効果が期待できる。次に、上記の測定の結果として得られたゲル化検出時間を図5に示す。Tween20が0.005以上含まれるとき、ゲル化検出時間が遅くなる傾向があった。これにより、Tween20を適量添加すれば、エンドトキシンに由来しない凝集を抑制できることが示された。同様に、Tween20に代わって界面活性剤としてTritonX100を用いたときの反応曲線を図6に示す。図6の横軸は反応時間、縦軸はゲル粒子数である。TritonX100が0すなわち未添加および0.0005のとき、上記のエンドトキシンに由来しない凝集物ゲル粒子の生成により、ゲル粒子数は反応開始直後から時間の経過とともに急峻に増加した。これに対し、TritonX100が0.005以上含まれるとき、ゲル粒子数の反応開始直後の急峻な増加は抑制された。結果として得られたゲル化検出時間を図7に示す。TritonX100が0.005以上含まれるとき、ゲル化検出時間が遅くなる傾向があった。これにより、TritonX100を適量添加することによっても、エンドトキシンに由来しない凝集を抑制できることが示された。上記より、界面活性剤がTritonXまたは同等品であるときは、最終濃度が0.005以上0.5以下であれば、確実に、反応開始直後のゲル粒子数の急峻な増加が抑制される効果が期待できる。エンドトキシンに由来しない凝集物の生成が、AL試薬の種類やメーカーおよびロットによって異なることを考慮すると、一般的には、界面活性剤が0.0001以上10以下であれば、程度の差はあるとしても、反応開始直後のゲル粒子数の急峻な増加が抑制される効果が期待できる。上記のように、Tween20やTritonX100といった界面活性剤を混和液に添加することにより、エンドトキシンに由来しない凝集が抑制されることが認められたことを受け、Tween20を0.01含むAL試薬を調製した。このAL試薬100μLと10~0.0001EU/mLのエンドトキシンを含む試料100μLを混和した混和液すなわちTween20の終濃度は0.005を測定に供した。得られたエンドトキシン濃度とゲル化検出時間との関係及び、検量線を図8に示す。図3に示したTween20が未添加の場合の検量線と図8とを比較して判るように、まず、Tween20を添加した場合には試料中のエンドトキシン濃度が10~0.01EU/mLの範囲で、Tween20添加時のゲル化検出時間が未添加時より遅くなることはなかった。これは、Tween20がリムルス反応を阻害することはないことを示している。また、Tween20を添加した場合は、10~0.0001EU/mLの範囲で相関係数0.993という、良好な直線性を有する検量線を得ることができた。これは、Tween20添加によりエンドトキシンに由来しない凝集が抑制された効果と考えられる。さらに、Tweenがエンドトキシンに由来しない凝集を抑制する作用機序を調べるため、安息香酸アミジノフェニル以下、APBと記すことがあるの添加実験を行った。APBは、プロテアーゼ阻害剤の一つであり、リムルス反応の凝固酵素の活性を阻害する。別のAL試薬を用い、AL試薬100μLと0.1mMのAPB100μLを混和した混和液、および、AL試薬100μLと0.1のTween20を100μL混和した混和液を測定に用いた場合の反応曲線を図9に示す。また、予め0.1mMのAPBを含むAL試薬100μLと0.1のTween20を100μL混和した混和液を測定に供したときの反応曲線も図9に示した。図9から判るように、まず、APBを未添加の場合は、測定開始初期から、エンドトキシンに由来しない粒子数の急峻な増加が観察された。図4および図6と比べて粒子数の増加の程度が大きいのは、AL試薬が異なるためである。また、APBを添加した場合でも、上記のゲル粒子数の増加は抑制されることはなかった。これは、上記のエンドトキシンに由来しないゲル粒子数の急峻な増加は、攪拌の刺激による凝固酵素の活性化によるものではなく、蛋白質同士が凝集して生成した凝集体を計測していることを示している。そして、Tween20のみ、および、APBとTween20の両方を添加した場合では、上記のエンドトキシンに由来しないゲル粒子数の単調な増加は著しく抑制された。すなわちTween20が、蛋白質同士の凝集に対して大きな抑制効果を発揮していることが示された。また別のAL試薬を用い、AL試薬100μLと0.1mMのAPB100μLを混和した混和液、および、AL試薬100μLと0.1のTween20を100μL混和した混和液を測定に用いた場合の反応曲線を図10に示す。図10から判るように、このAL試薬を用いて、APBを未添加の場合は、測定開始初期から粒子数の急峻な増加は観察されず、約100分以降で、エンドトキシンに由来しない粒子数の増加が観察された。図4、図6および図9と比べて粒子数の増加の仕方が異なるのは、AL試薬が異なるためである。そして、APBを添加した場合、上記のゲル粒子数の増加は明確に抑制された。これは、上記のエンドトキシンに由来しないゲル粒子数の増加は、攪拌の刺激による凝固酵素の活性化によるものであることを示している。しかしながら、Tween20を添加しても、上記のエンドトキシンに由来しないゲル粒子数の増加は抑制されなかった。すなわちTween20は、熱処理済みアルブミンとは異なり、攪拌刺激による凝固酵素の活性化に対しては抑制効果を有していないことが示された。このようにTweenは、主に攪拌の刺激による凝固酵素の活性化を抑制すると考えられている熱処理済みアルブミンとは作用機序が異なり、攪拌の刺激による蛋白質同士の凝集を抑制する。従って、熱処理済みアルブミンでは効果が期待できないようなAL試薬に対してもエンドトキシンに由来しない凝集を抑制する効果が期待できる。また、Tweenは、天然物のアルブミンとは異なり、化学的な合成が可能であるため、初期過程におけるエンドトキシンの混入を排除することが容易である。実際、Tweenはリムルス反応を阻害せず図8、Tweenの添加によりゲル化検出時間が遅くなったこと図4および図5は、本実施例で使用したTweenのエンドトキシン含有量が十分に低いことを示している。上記の実施例においては、本発明を、光散乱粒子計測装置1を用いた光散乱法によってエンドトキシン濃度を測定する場合に適用した例について説明したが、本発明が適用されるのは、光散乱法による場合だけでないことはもちろんである。例えば、攪拌比濁法によってエンドトキシン濃度を測定する場合に適用してもよい。以下に、攪拌比濁法に用いられる比濁計測装置について説明する。図11には、本実施例のエンドトキシンの測定装置の別の例としての比濁計測装置21の概略構成を示す。この比濁計測装置21では、攪拌比濁法によってエンドトキシンの測定を行う。比濁計測装置21においても、調製した希釈系列のエンドトキシンを含んだ試料を混和液保持手段としての測定用ガラス容器以下、キュベット22に移注する。キュベット22の周囲を囲うように保温器25が設けられている。この保温器25の内部には図示しない電熱線が備えられており、この電熱線に通電されることにより、キュベット22を約37°Cに保温するようになっている。このキュベット22の中にはステンレス製の攪拌子23が備えられている。この攪拌子23は、キュベット22の下部に設置された攪拌器24の作用によってキュベット22の中で回転する。すなわち、攪拌器24はモータ24aとモータ24aの出力軸に設けられた永久磁石24bとからなっている。そして、モータ24aに通電されることで永久磁石24bが回転する。この永久磁石24bからの磁界が回転するために、ステンレス製の攪拌子23が回転磁界の作用で回転する。この攪拌子23と攪拌器24とは攪拌手段に相当する。なお、比濁計測装置21には光入射手段としての光源26と受光手段としての受光素子29が設置されている。光源26から出射した光はアパーチャ27を通過した後、保温器25に設けられた入射孔25aを通過してキュベット22中の試料に入射される。キュベット22中の試料を透過した光は保温器25に設けられた出射孔25bから出射され、アパーチャ28を通過して受光素子29に照射される。受光素子29では、受光した光の強度に応じた光電信号を出力する。この光電信号の出力は、判定手段及び導出手段としての演算装置30に入力される。演算装置30においては、予め格納されたプログラムアルゴリズムに従い、反応開始時刻の判定及び、エンドトキシン濃度の導出が行われる。なお、この他に導出されたエンドトキシン濃度を表示する表示装置を含めて比濁計測装置21としてもよい。なお、上記の実施例では、混和液に添加する界面活性剤として、Tween20やTritonX100を用いる例について説明したが、界面活性剤としては、商品名が異なっていたとしてもポリオキシエチレンソルビタンモノラウレート、ポリオキシエチレンソルビタンモノパルミテート、ポリオキシエチレンソルビタンモノステアレート、ポリオキシエチレンソルビタンモノオレエート、ポリオキシエチレンソルビタントリオレエート、ポリオキシエチレン-p-イソオクチルフェノール、などを使用してもよい。また、他の非イオン系界面活性剤、例えば、Pluronic、ポリエチレンオキシド/ポリプロピレンオキシドブロックポリマー、しょ糖脂肪酸エステルソルビタン脂肪酸エステル、ポリオキシエチレンソルビタン脂肪酸エステル、脂肪酸アルカノールアミド、ポリオキシエチレンアルキルエーテル、ポリオキシエチレンアルキルフェニルエーテルを用いても、同等の効果を期待することができる。また、界面活性剤であれば、非イオン系のものでなくとも蛋白質同士の凝集を抑制する効果が得られると考えられるので、非イオン系界面活性剤に、シリコーンオイルや植物油を乳化したエマルジョン型消泡剤を使用してもよい。また、陰イオン系界面活性剤、例えば、純石けん分脂肪酸ナトリウム、純石けん分脂肪酸カリウム、アルファスルホ脂肪酸エステルナトリウム、直鎖アルキルベンゼンスルホン酸ナトリウム、アルキル硫酸エステルナトリウム、アルキルエーテル硫酸エステルナトリウム、アルファオレフィンスルホン酸ナトリウム、アルキルスルホン酸ナトリウムを使用してもよい。また、両性イオン系界面活性剤、例えば、アルキルアミノ脂肪酸ナトリウム、アルキルベタイン、アルキルアミンオキシドを使用してもよい。また、陽イオン系界面活性剤、例えば、アルキルトリメチルアンモニウム塩、ジアルキルトリメチルアンモニウム塩を使用してもよい。また、上記した各種の界面活性剤を混合して使用してもよい。<実施例2>上記の実施例1においては、一般的な光散乱粒子計測装置1及び、比濁計測装置21を用いて、試料とAL試薬の混和液に対してTween20やTritonX100などの界面活性剤を添加する例について説明したが、本発明を実施するために、試料とAL試薬の混和液に対して自動的にTweenやTritonXなどの界面活性剤を添加する特別な光散乱粒子計測装置及び、比濁計測装置を用いることとしてもよい。図12には、試料とAL試薬の混和液に対してTweenやTritonXなどの界面活性剤を自動的に添加する界面活性剤添加装置13を備えた光散乱粒子計測装置31について示す。図2で説明した光散乱粒子計測装置1との相違点は、界面活性剤貯留部13aと、界面活性剤添加管13bを有している点である。この界面活性剤貯留部13aには、測定に先立ち、TweenやTritonXなどの界面活性剤を精密に測定された量だけ貯留しておく。そして、測定時に試料とAL試薬の混和液が測定位置にセットされた際に、図示しないスイッチがONされ、例えば小型ポンプ13cによって、界面活性剤貯留部13aに空気圧が作用する。そして、界面活性剤貯留部13aに貯留されたTweenやTritonXなどの界面活性剤が、界面活性剤添加管13bを介してキュベット内に添加される。本実施例によれば、より簡単に、混和液を攪拌する場合に生じる、エンドトキシンに由来しない凝集を低減することができ、エンドトキシン測定の測定精度を向上することができる。上記の界面活性剤添加装置13は界面活性剤添加手段に相当する。なお、本実施例における界面活性剤添加装置13は、上記の構成によるものに限定されないことは当然である。例えば、精密に吐出量を制御可能な液体吐出装置によって、TweenやTritonXなどの界面活性剤を、測定時に試料とAL試薬の混和液が測定位置にセットされた際に、吐出するようにしてもよい。あるいは、TweenやTritonXなどの界面活性剤を必要量吸い上げたスポイト、あるいはピペットをセットしておき、それらの可撓性のポンプ部を圧縮することで、TweenやTritonXなどの界面活性剤を、ガラス製試料セル4内の混和液に添加するようにしてもよい。なお、TweenやTritonXなどの界面活性剤を試料とAL試薬の混和液に添加するタイミングは、攪拌子11による攪拌が開始する前であることが望ましい。これによって、より確実に、混和液を攪拌する場合に生じる、エンドトキシンに由来しない凝集を抑制することができる。しかしながら、攪拌子11による攪拌の開始と同時あるいは、攪拌が開始した後であっても、TweenやTritonXなどの界面活性剤を試料とAL試薬の混和液に添加することで、エンドトキシンに由来しない凝集を抑制する効果は得ることができる。図13には、同様に、試料とAL試薬の混和液に対してTweenやTritonXなどの界面活性剤を自動的に添加する界面活性剤添加装置33を備えた比濁計測装置41について示す。図11で説明した比濁計測装置21との相違点は、シリンジ33a、ピストン33b及びピストン押圧部33cからなる界面活性剤添加装置33を有している点である。ここでは、シリンジ33aには、TweenやTritonXなどの界面活性剤が必要量吸い上げられている。そして、測定時に試料とAL試薬の混和液を保持するキュベット22が測定位置にセットされた際に、図示しないスイッチがONされ、ピストン押圧部33cがピストン33bを押圧し、シリンジ33a内のTweenやTritonXなどの界面活性剤が、キュベット22内に添加される。このような比濁計測装置41によっても、より簡単に、混和液を攪拌する場合に生じる、エンドトキシンに由来しない凝集を低減することができ、エンドトキシン測定の測定精度を向上することができる。なお、本実施例における界面活性剤添加装置33も、上記の構成によるものに限定されないことは当然であり、同等の機能を有するものであれば、いかなる装置を使用してもよい。