"下記式1:、式2:又は式3:で示されるレスベラトロール誘導体、これらの薬学的に許容可能な塩、エステルおよびエーテルからなる群より選ばれる1種以上の化合物を含有することを特徴とするサーチュイン発現増強剤。下記式1:、式2:又は式3:で示されるレスベラトロール誘導体、これらの薬学的に許容可能な塩、エステルおよびエーテルからなる群より選ばれる1種以上の化合物を含有することを特徴とするサーチュイン活性促進剤。本発明者らは、サーチュイン発現増強剤およびサーチュイン活性促進剤に関する前記の状況を鑑みて、新規なサーチュイン発現増強剤およびサーチュイン活性促進剤の探索をした。その結果、新たに作製したレスベラトロール誘導体類が優れたサーチュイン発現増強剤およびサーチュイン活性促進剤を有する化合物であることを見出し、本発明を完成するに至った。したがって、本発明は、優れたサーチュイン発現増強剤およびサーチュイン活性促進剤を提供することを目的とする。本発明の要旨は、1下記式1:、式2:又は式3:で示されるレスベラトロール誘導体、これらの薬学的に許容可能な塩、エステルおよびエーテルからなる群より選ばれる1種以上の化合物を含有することを特徴とするサーチュイン発現増強剤、2前記式1、式2又は式3で示されるレスベラトロール誘導体、これらの薬学的に許容可能な塩、エステルおよびエーテルからなる群より選ばれる1種以上の化合物を含有することを特徴とするサーチュイン活性促進剤に関する。本発明のサーチュイン発現増強剤は、公知の増強剤であるレスベラトロールと比べ優れたサーチュイン発現増強作用を有していることから、新規のサーチュインサーチュイン発現増強剤として有用である。また、本発明のサーチュイン活性促進剤は、公知の促進剤であるレスベラトロールと同等以上の優れたサーチュイン活性促進作用を有していることから、新規のサーチュインサーチュイン活性促進剤として有用である。以下、本発明について詳細に説明する。本発明のサーチュイン発現増強剤およびサーチュイン活性促進剤は、下記式1:、式2:又は式3:で示されるレスベラトロール誘導体、これらの薬学的に許容可能な塩、エステルおよびエーテルからなる群より選ばれる1種以上の化合物を含有することを特徴とする。本発明において、サーチュイン発現増強剤とは、代謝経路を包括的に制御する酵素であるサーチュインの細胞内の発現を増強することができる薬剤をいう。また、サーチュイン活性促進剤とは、代謝経路を包括的に制御する酵素であるサーチュインの酵素活性を促進することができる薬剤をいう。サーチュイン発現増強作用およびサーチュイン活性促進作用は、具体的には、後述の実施例に記載の方法により、それぞれを測定し、公知の化合物であるレスベラトロールの作用と対比することで確認することができる。前記レスベラトロール誘導体類において、炭素-炭素2重結合は、トランスまたはシスであってよく、シス体とトランス体との混合物を含む。前記レスベラトロール誘導体類の薬学的に許容可能な塩としては、例えば、リチウム塩、ナトリウム塩、カリウム塩等のアルカリ金属塩;マグネシウム塩、カルシウム塩、バリウム塩等のアルカリ土類金属塩;アルミニウム塩;アルミニウムヒドロキシド塩等の金属ヒドロキシド塩;アルキルアミン塩、ジアルキルアミン塩、トリアルキルアミン塩、アルキレンジアミン塩、シクロアルキルアミン塩、アリールアミン塩、アラルキルアミン塩、複素環式アミン塩等のアミン塩;α-アミノ酸塩、ω-アミノ酸塩等のアミノ酸塩;ペプチド塩又はそれらから誘導される第1級、第2級、第3級若しくは第4級アミン塩等が挙げられる。これらの薬理的に許容し得る塩は、単独で又は2種以上を混合して用いることができる。また、前記レスベラトロール誘導体類の薬学的に許容可能なエーテル又はエステルとは、ヒドロキシ基-OHの1個又は2個以上がエーテル化またはエステル化ヒドロキシ基であるものをいう。これらのエーテル化またはエステル化ヒドロキシ基は、非置換のまたは置換された1~26個の炭素原子を有する直鎖または分枝鎖アルキル基、または非置換のまたは置換された1~26個の炭素原子を有する直鎖または分枝鎖脂肪族、芳香脂肪族または芳香族カルボン酸に由来してもよい。エーテル化ヒドロキシ基はさらにグリコシド基であってもよく、エステル化ヒドロキシ基はさらにグルクロニドまたは硫酸基であってもよい。これらの薬理的に許容し得るエーテル又はエステルは、単独で又は2種以上を混合して用いることができる。前記のレスベラトロール誘導体類はいずれも、レスベラトロールや公知のレスベラトロール誘導体に比べて、優れたサーチュイン発現増強作用を有し、レスベラトロールに比べて同程度以上のサーチュイン活性促進作用を有する。したがって、本発明は、前記レスベラトロール誘導体類を有効成分として含有するサーチュイン発現増強剤およびサーチュイン活性促進剤を提供することができる。次に本発明を実施例に基いて詳細に説明するが、本発明はかかる実施例にのみ限定されるものではない。実施例1:UHA1028の生成および単離精製トランス-レスベラトロール東京化成工業株社製1g、p-クマル酸和光純薬株社製1gをエタノール20mLに溶解し、ミネラルウォーター商品名ゲロルシュタイナーサッポロ飲料株製20mLを加えて、レスベラトロール、p-クマル酸含有溶液pH=4.6を得た。このレスベラトロール、p-クマル酸含有溶液をオートクレーブにて130°C、90分間加熱した。得られた反応溶液のうち1mLをメタノールにて50mLにメスアップし、このうち10μLをHPLCにより分析し、UHA1028の生成を確認した。HPLC分析は以下条件にて行った。カラム:逆相用カラムDevelosil登録商標C-30-UG-54.6mmi.d.×250mm移動相:AH2O0.1トリフルオロ酢酸TFA,Bアセトニトリル0.1TFA流速:1mL/min注入:10μL検出:254nm勾配容量:80A/20Bから20A/80Bまで30分間、20A/80Bから100Bまで5分間、100Bで10分間全て直線得られた反応物からUHA1028を分取HPLCにより精製し、常法により乾燥したところ、褐色粉末状の物質であった。なお、UHA1028の分子量を高分解能電子イオン化質量分析法ElectronIonization-MassSpectrometryにて測定したところ、測定値は408.4436であり、理論値との比較から、以下の分子式を得た。理論値C24H24O6M:408.4438分子式C24H24O6次に、前記UHA1028を核磁気共鳴NMR測定に供し、1H-NMR、13C-NMR及び各種2次元NMRデータの解析から、前記UHA1028が前記式3で表される構造を有することを確認した。実施例2:UHA4002の生成および単離精製トランス-レスベラトロール700mgをエタノール14mlに溶解し、2.5NaHCO3水溶液を14ml加えて、レスベラトロール含有溶液pH9.9を得た。このレスベラトロール含有溶液をオートクレーブSANYOLABOAUTOCLAVEにて130°C、20分間加熱した。次いで、1回目のオートクレーブ処理にて得られた反応溶液に、エタノール14mlと5.0NaHCO3水溶液を14ml加え、再度、オートクレーブSANYOLABOAUTOCLAVEにて130°C、20分間加熱した。得られた反応溶液のうち1mLをメタノールにて50mlにメスアップし、このうちの10μlをHPLCにより分析し、UHA4002の生成を確認した。HPLC分析は、実施例1と同様の条件で行った。得られた反応物からUHA4002を分取HPLCにより精製し、常法により乾燥したところ、褐色粉末状の物質であった。なお、実施例1と同様に高分解能電子イオン化質量分析法にてUHA4002の分子量を測定したところ、測定値は439.4803であり、理論値との比較から、以下の分子式を得た。理論値C28H23O5M:439.4792分子式C28H23O5次に、前記UHA4002を核磁気共鳴NMR測定に供し、1H-NMR、13C-NMR及び各種2次元NMRデータの解析から、前記UHA4002が前記式1で表される構造を有することを確認した。実施例3:UHA9021の生成および単離精製トランス-レスベラトロール1g、シナピン酸和光純薬株社製1gをエタノール20mLに溶解し、ミネラルウォーター20mLを加えて、レスベラトロール、シナピン酸含有溶液pH=4.9を得た。このレスベラトロール、シナピン酸含有溶液をオートクレーブにて130°C、90分間加熱した。得られた反応溶液のうち1mLをメタノールにて50mLにメスアップし、このうち10μLをHPLCにより分析し、UHA9021の生成を確認した。HPLC分析は、実施例1と同様の条件で行った。得られた反応物からUHA9021を分取HPLCにより精製し、常法により乾燥したところ、褐色粉末状の物質であった。なお、実施例1と同様に高分解能電子イオン化質量分析法にてUHA9021の分子量を測定したところ、測定値は348.3915であり、理論値との比較から、以下の分子式を得た。理論値C22H20O4M:348.3918分子式C22H20O4次に、前記UHA9021を核磁気共鳴NMR測定に供し、1H-NMR、13C-NMR及び各種2次元NMRデータの解析から、前記UHA9021が前記式2で表される構造を有することを確認した。実施例4:ヒトサーチュイン活性の比較ヒトサーチュインSIRT1に対するレスベラトロール誘導体の活性促進作用を評価するために、SIRT1活性測定用キットSensoLyte登録商標GreenSIRT1AssayKitANASPEC社製を用いて測定を行った。試料にはレスベラトロール、活性促進作用が報告されているε-ビニフェリン和光純薬株社製、本発明品であるUHA4002の3種類を用いた。各試料をジメチルスルホキシドDMSO、和光純薬株社製に100μMの濃度で溶解させて試験に使用した。測定は前記測定用キットに付属の取り扱い説明書の方法に準じて行った。まず、コンポーネントAサーチュイン基質50μLとコンポーネントENAD50μLをコンポーネントDアッセイバッファー4.9mLに混合し、サーチュイン基質溶液とした。次にコンポーネントCリコンビナントサーチュインをコンポーネントDで20倍希釈し、これをサーチュイン酵素溶液とした。次にコンポーネントGデベロッパー500μLとコンポーネントFニコチンアミド500μLにコンポーネントD4mLに混合し、これを1×デベロッパー溶液とした。酵素反応は96ウェルアッセイブラックプレートコーニングジャパン株社製を用いて行った。ウェルにサーチュイン酵素溶液40μLと試料10μLを添加した。なお、コンポーネントD40μLと試料10μLを添加したものを化合物コントロールとした。37°C10分プレインキュベートし、これにサーチュイン基質溶液を50μL添加した試料終濃度10μM。化合物コントロールにはコンポーネントD50μLを添加した。穏やかに30秒程度撹拌し、37°Cで60分インキュベートした。1×デベロッパー溶液を各ウェルに50μLずつ加えた。撹拌混合後に37°C10分インキュベートし、これを蛍光検出器ThermoFluoroskanAscentサーモフィッシャーサイエンティフィック株製にて励起波長485nm、測定波長538nmで測定した。得られたデータをもとに、レスベラトロールを添加した条件の活性を100とし、各試料を添加した条件の活性を算出した。これらの結果を表1に示した。表1の結果より、UHA4002にレスベラトロール、ε―ビニフェリンよりも優れたサーチュイン活性促進作用が見られた。また、UHA1028、UHA9021についても、同様にして調べたところ、レスベラトロールと同程度のサーチュイン活性促進作用が確認された。実施例5:サーチュイン遺伝子発現量の比較次にヒト細胞におけるサーチュイン遺伝子SIRT1の発現増強作用を評価するために、ヒト臍帯静脈内皮細胞HuvecLONZA株社製を用いたリアルタイムRT-PCR解析を行った。試料にはレスベラトロール、本発明品であるUHA1028、UHA4002、UHA9021の4種類を用いた。各試料をDMSOに2mMの濃度で溶解させたものを試験に使用した。Huvecの培養には、内皮細胞添加因子セット-2EGM登録商標-2SingleQuots、タカラバイオ株社製の内皮細胞添加因子hEGF、ヘパリン、ヒドロコルチゾン、FBS、hFGF-B、アスコルビン酸、VEGF、R3-IGF、GA-1000を全量添加した内皮細胞基本培地-2EBM登録商標-2、タカラバイオ株社製を使用した。培養用ディッシュには、細胞培養用コラーゲンIコート10cmディッシュ日本BD株社製を使用した。細胞は、5×104cell/mLに調製した培養液を10mL播種し、37°C、5CO2条件下で62時間培養し、80コンフルエント以上の状態で試験に使用した。継代回数は5回の細胞を使用した。試験は定法に従って実施した。80コンフルエント以上の状態の細胞に各試料を終濃度10μMとなるように添加したDMSO持込量0.5。なお、溶媒であるDMSOのみを0.5添加したものをネガティブコントロールとした。試料添加後、37°C、5CO2条件下で24時間培養し、細胞よりRNA抽出キットNucleoSpin登録商標RNAIIタカラバイオ株社製を用いて全量RNAを抽出精製した。得られたRNAを2ステップリアルタイムRT-PCR用逆転写試薬PrimeScript登録商標RTMasterMixタカラバイオ株社製の取扱説明書に準じて逆転写反応を行った。つまり5×PrimescriptRTMasterMix4μL、全量RNA1μgを混合し、RNaseFreedH2Oで20μLに調製した。PCR用サーマルサイクラーGeneAmp登録商標PCRSystem9700AppliedBiosystem株社製を使用して{37°C15分→85°C5秒}×1サイクルのプログラムにて逆転写反応を行った。逆転写反応液をリアルタイムRT-PCR用希釈試薬EASYDilutionタカラバイオ株社製にて10倍希釈した希釈液をリアルタイムRT-PCR解析に使用した。リアルタイムRT-PCR解析は定法に従って行った。解析にはECORealtimeRT―PCRsystemイルミナ株製を使用した。プライマーには、サーチュインフォワードプライマー;プライマーID:HA132648-F、サーチュインリバースプライマー;プライマーID:HA132648-Rを使用した。細胞内遺伝子の内部標準はβ-アクチンとし、そのプライマーとして、ACTBフォワードプライマー;プライマーID:HA067803-F、ACTBリバースプライマー;プライマーID:HA067803-Rいずれもタカラバイオ株社製を使用した。反応にはリアルタイムRT-PCR試薬SYBR登録商標PremixEXtaqIITliRNaseHPlusタカラバイオ株社製を使用した。反応液は48ウェルPCRプレートイルミナ株製中に2×SYBRPremixEXtaqIITliRNaseHPlus5μL、フォワードプライマー50μM0.08μL、リバースプライマー50μM0.08μL、逆転写反応液2μL、dH2O2.84μL総量10μLを混合して95°C30秒→{95°C15秒→60°C1分}×40サイクル→95°C15秒→55°C15秒→95°C15秒のプログラムにてPCR反応を行った。得られた各細胞中のβ-アクチンとサーチュインSIRT1のCt値ThresholdCycle:一定の増幅量閾値に達するサイクル数からサーチュイン発現量の相対値を算出した。結果を図1に示した。図1の結果より、UHA1028、UHA4002、UHA9021いずれにおいても、レスベラトロールよりもメッセンジャーRNAレベルにおいて強いサーチュイン発現増強作用が確認された。実施例6:サーチュインタンパク質発現量の比較次にヒト細胞におけるサーチュインタンパク質発現増強作用を評価するために、Huvecを用いたウェスタンブロット解析を行った。試料にはレスベラトロール、本発明品であるUHA1028、UHA4002、UHA9021の4種類を用いた。各試料をDMSOに溶解し、10mMの濃度で溶解させたものを試験に使用した。Huvecの培養は、実施例3と同様の方法で行った。また、継代回数は4回の細胞を使用した。試験は定法に従って実施した。つまり、80コンフルエント以上の状態の細胞に各試料を終濃度50μMとなるように添加したDMSO持込量0.5。なお、溶媒であるDMSOのみを0.5添加したものをネガティブコントロールとした。UHA4002の場合、試料添加後に37°C、5CO2条件下で2時間培養して細胞を回収した。UHA1028、UHA9021の場合には、試料添加後に37°C、5CO2条件下で8時間培養して細胞を回収した。プロテアーゼインヒビターカクテル錠CompleteMini,EDTA-freeロシュダイアグノスティックス株製1錠をリン酸緩衝液PBSPhosphateBufferedSaline1.5mLに溶解させ、これをプロテアーゼインヒビター溶液とした。PBS850μLにプロテアーゼインヒビター溶液150μLを混合して細胞破砕液を調整した。回収した細胞に細胞破砕液100μLを添加し、超音波処理と遠心分離により粗タンパク質溶液を調製した。得られたタンパク質溶液は、ProteinAssayブラットフォード法によりタンパク質濃度の定量を行った。タンパク質のSDS-ポリアクリルアミド電気泳動に供するタンパク質サンプルは、タンパク質4μg相当に1/5量のLaemmliサンプルバッファー10ドデシル硫酸ナトリウム、100mMジチオトレイトール、30グリセロール、50mMTris-HCl、pH6.8を添加して96°Cで5分間加熱変性させたものを使用した。ゲルにはミニプロティアンTGX7.5Gelバイオラッドラボラトリーズ株製を使用した。変性させたタンパク質サンプルを全量ゲルに供し、200V、30分間電気泳動した。電気泳動後、セミドライ式ブロッティング装置TRANS-BLOTS-DSEMI-DRYTRANSFERCELLバイオラッドラボラトリーズ株製でPVDF膜ミリポア株社製にブロッティングした。ここから、Anti-SIRT1RabbitmonoclonalAntibody一次抗体、abcam社製、Anti-RabbitIgG,HRP-linkedAntibody二次抗体、CellSignaling社製を用いた抗体反応によってサーチュインの検出を行った。これらの結果を図2、図3に示した。図2、図3の結果より、UHA1028、UHA4002、UHA9021いずれにおいてもレスベラトロールよりもサーチュインタンパク質発現量が増強されたことがわかる。"