"ポリマを有する基板を含むバイオセンサ製品であって、前記ポリマは前記基板の表面に関連付けられており、前記ポリマは、[化1]に示された化学式Iのポリマを含み、前記化学式Iは、金属‐イオンキレート基X、イオン化基y、及び表面実在基zのうちの少なくとも1つを有し、Rは、存在しないか、水素、1から6までの炭素原子を有する置換若しくは未置換の直鎖若しくは分枝の一価のヒドロカルビル残基であり、R’は、1から18までの炭素原子を有する不飽和のモノマの共重合から生じる置換若しくは未置換の直鎖若しくは分枝の2価のヒドロカルビル残基であり、R’’は、1から20までの炭素原子を有する置換若しくは未置換の直鎖若しくは分枝の2価のヒドロカルビル残基であり、Sは、基板に対する付着に関する少なくとも1つのポイントを含み、Wは、少なくとも1つの金属イオンキレート剤残基を含み、Xは、-NH-、-NR-、又はOであり、x基:yz基のモル比は、約2:8から約8:2までである、ことを特徴とするバイオセンサ製品。Wと錯体化された少なくとも1つの金属-イオンを有する前記ポリマをさらに含み、前記少なくとも1つの金属-イオンは、Ni、Cu、Zn、Co、Fe又はこれらの組み合わせから選択された少なくとも一つの金属イオンを含むことを特徴とする請求項1に記載の製品。Wと錯体化された前記少なくとも1つの金属イオンに関連付けられたHisタグ付きエンティティをさらに含む請求項2に記載の製品。前記基板表面のポリマは、約20nmから約1000nmの膜厚を有する連続層又は半連続層を含むことを特徴とする請求項1に記載の製品。請求項1に記載のバイオセンサ製品を製造する方法であって、前記方法は、パスA又はパスBを含み、前記パスAは、第1のアクリルアミドモノマと第2のアクリルアミドモノマとの混合物から構成され且つ付着されたポリマを有する基板表面と活性化剤とを接触して活性化ポリマを形成するステップと、当該形成された活性化ポリマをキレート基フォーマに接触させて、化学式Iのポリマを形成するステップと、を含み、前記パスBは、少なくとも1つの金属‐イオンキレート剤残基を有する少なくとも1つのアクリルアミドモノマと、不飽和有機シラン修飾表面とを重合化して、化学式Iのポリマを形成するステップを含むことを特徴とする方法。以下の実施例は、上述した開示を使用する手法をより完全に説明し、かつ、本開示の種々の態様を実施するよう意図された最良の態様を説明することに用いる。これら実施例は、本開示の範囲をなんら限定するものではなく、むしろ例示の目的で与えられているものと理解すべきである。動作する実施例は、本開示のLIDセンサをどのように準備し及び使用するかについて説明しており、比較実施例と対比されている。PAA-NTA修飾表面を有するLIDセンサの準備3.5-4のpHを与える酢酸を含むSigmaAldrichから入手した2wtのメタクリロキシプロピルトリメトキシシランMOPSmethacryloxypropyltrimethoxysilane水溶液が、クリアになるまで例えば、約15分室温にて準備され且つ攪拌された。付加的洗浄ステップなして受信されるものとして用いられてコーニング社から入手した露出したEpic登録商標インサートが、MOPS溶液に2時間接触され、次に、乾燥されたアルゴンフローに接触されて、50°Cにて1時間乾燥された。これは、インサート表面を用いてシランの凝縮を確実にするためである。そして、MOPSによって処理されたインサートは、室温まで冷却されて、DI水で洗浄され、次に、IPAで洗浄され、最終的に、アルゴンフロー下で乾燥された。MOPSによって処理されたインサートは、アクリル酸/ジメチルアクリルアミド50/50とIrgacure184との水性のモノマ混合体が、以下の通りに接触された。Cibaから入手した20mgのIrgacure184が、フラスコ内で重み付けられ、7mLのDI水が添加された。そして、1.5gのアクリル酸AA及び1.5gのジメチルアクリルアミドDMAが添加された。フラスコは隔壁で密閉され、溶液が、バブリングアルゴンを用いて15分間脱ガスされた。次に、500マイクロリットルの脱ガスされたモノマ混合物が、一定の調剤率にて液体被膜装置等を用いて堆積され、カバープレートにより任意に覆われた。当該堆積は、基板の表面において均一な被覆を得るためである。当該堆積は、自動ピペッターを用いて、所定の386ウェルの位置において、一定量のモノマ混合物の投与する方法及び同様の堆積方法により、シラン処理されたインサート表面に、垂らすことによって行われた。in-situ重合化は、フュージョンランプを用いたUV光源により実行されたバルブH、80の出力、最小ベルト速度において5回。そして、カバープレートは除去され、付着ゲル層は、超音波浴槽においてDI水で徹底的に洗浄されて、過剰な物質又は無結合な物質が除去された。表面は穏やかなアルゴンフロー下で最終的に乾燥された。ポリマ化及び洗浄の後に、Epic登録商標インサートが、感圧接着剤PSA:pressuresensitiveadhesive粘着テープを用いて、コーニング社の穴あきウェルプレートを用いて組み立てられた。この段階において、このプレートはPAA/DMAm50/50と称した。表面上のポリママトリックス内に含まれるカルボン酸基は、水に溶解された50mMのスルホ-NHS及び200mMのEDCの混合物を用いた処理によって活性化された。そして、活性化されたコポリマは、ホウ酸緩衝液pH=9.2において0.2Mで溶解されたカルボキシメチルリジンCMLと反応された。Epic登録商標装置を使用して測定された次のhisタグ付けCAII固定化に与えるCML溶液のpHの影響が図2に示されている。残りの活性化されたエステルは、ホウ酸緩衝液pH=9.2を用いて遮断された。最終的に、硫酸ニッケルが、40mMにて水に添加された。この段階において、上述のPAA-NTAアフィニティ表面コーティング修飾を有するマイクロプレートは、hisタグ付きタンパク質をキャプチャする準備ができた。PAA-NTAアフィニティ表面修飾を有するEpic登録商標バイオセンサを用いたhisタグ付きCAII/フロセミド分析hisタグ付きCAII固定化は、50マイクロg/mLのタンパク質にて、実施例1のLIDセンサ上においてpH=7.4のhepes150mMのNaCl緩衝液中で、実行された。固定化を完了せしめるために、プレートは一晩4°Cにて培養された。第2ステップにおいて、洗浄後に、EDC/NHS処理200mM/50mMが、固定されたタンパク質を有する表面に対して実行された。そして、エタノールアミンが、残存する活性化エステルを遮断するのに用いられた。この実験は、異なるPAA-NTA化学物質を有する数個の検出表面を用いて、同一条件にて実行された。AA:DMAモノマ比は、例えば、約75:25~約30:70wt/wt、相対モル比mol/mol又はmolパーセントmolまで変更され得る。これら組成の異なるPAA/DMAmマトリックスは、実施例1に係るPAA-NTAアフィニティ表面にさらに修飾された。室温にて平衡後、PAA-NTA親和性表面プレートが自動化されたワークステーションを使用してPBSにより洗浄され、0.1のDMSOを含む15マイクロリットルのPBSが各ウェルに添加された。そして、フロセミドが添加されて、10マイクロMの最終濃度に達した。固定化レベル及び結合の応答の双方が、Epic登録商標装置を使用して記録された。固定化レベル及び結合応答性が図3及び4にそれぞれ示されている。さらに、結合応答性に与えるアフィニティ表面に含まれるAAの量の影響が、図5に与えられている。ニッケル処理がある場合又はない場合のPAA-NTAアフィニティ表面修飾を有するEpic登録商標バイオセンサを用いたHisタグ付きCAII固定化レベル分析同一の実施例1の化学的処理が、PAA-NTA表面修飾によって被覆された384ウェルのマイクロプレートを準備するのに用いられた。ニッケル溶液は、マイクロプレートの3分の1だけに添加された。そして、Hisタグ付き炭酸アンヒドラーゼHisタグ付きCAIIが、ニッケル錯体形成がある場合又はない場合において、50マイクロg/mLにて、PAA-NTA表面上においてhepes150mMのNaCl緩衝液内で一晩、固定された。平行実験において、天然のCAIIが、PAA-NTA上において50マイクログラム/mLのhepes塩類において、固定された。Hisタグ付きCAII露出マイクロプレートをPBSを用いて洗浄し、それに続いてDI水洗浄を熱心に行った後に、共有結合後処理は、EDC/NHS処理200mM/50mMを用いて、30分間、水中にて実行され、それに続いて、エタノールアミン阻止ステップホウ酸塩緩衝液にて0.2Mが実行された。図6に示されているように、PAA-NTA600上の8His-CAII、PAA-NTA610上のCAIIネイティブ、及びNiイオンが存在しないPAA-NTA上の8His-CAII620に対する固定化レベルが、Epic登録商標装置を使用して、測定された。8His-CAIIIは、8ヒスチジン基ヘキサヒスチジン6His-CAIIの代わりにオクタキサヒスチジンを有するテールによりタグ付けされたカルボニックアンヒドラーゼである。多くの数のヒスチジン残基は、錯体の安定性を改善する。共有結合性後処理がある場合又はない場合のPAA-NTA表面におけるHisタグ付けCAIIの固定化レベル実施例1の処理手順は、PAA-NTA表面修飾を有する384ウェルのマイクロプレートを準備するために繰り返された。Hisタグカルボニックアンヒドラーゼが、PAA-NTA修飾マイクロプレートを用いて、約16時間、hepes150mmのNaCl緩衝液中で、50マイクログラム/mLにて、固定された。PBSにより洗浄してDI水で洗浄した後に、EDC/NHS処理200mM/50mMは、30分間、水中にて実行され、それに続いて、アフィニティ/共有結合性相互作用に対応するマイクロプレートの半分の領域のみにおけるエタノールアミン阻止ステップホウ酸塩緩衝液にて0.2Mが実行された。マイクロプレートの一方の半分はソーキングバッファPBSDMSOに載置された。そして、固定化レベルは、図7に示されているように、Epic登録商標装置を使用して、測定された。そして、固定されたタンパク質を高品質なソーフィングバッファの添加剤及び混合体に接触させた後に、タンパク質の浸出は、図8に示されているように、Epic登録商標装置で測定された。[PAA-NTAアフィニティ表面における低pI固定化に関するEpic登録商標分析]実施例1の処理手順は、40/60及び30/70のAA/DMA比を有するPAA/DMAマトリックスに基づいてPAA-NTA被膜表面を有する384ウェルのマイクロプレートを準備するために繰り返された。SET9ヒストンH3メチルトランスフェラーゼ及びGLKタンパク質グルコキナーゼ双方のタンパク質に対してpI=4.8等の低pIのhisタグ付きタンパク質は、約16時間、hepes塩類緩衝液中で、50マイクログラム/mLにて、固定された。第2ステップにおいて、PBSにより洗浄してDI水で徹底的に洗浄した後に、EDC/NHS処理200mM/50mMは、30分間、水中にて実行され、それに続いて、エタノールアミン阻止ステップが実行された。固定化レベルは、図9に示されているように、Epic登録商標装置を使用して、測定された。比較として、また、同一の低pIタンパク質も、アミン結合されたd-EMA上の50マイクログラム/mlにて酢酸緩衝液pH=5.5において固定された。あらかじめ遮断されたアミンのようなポリエチレンalt無水マレイン酸d-EMA等のポリマエンティティ等の比較的結合力のあるポリマは、2006年6月7日に出願された共有であり且つ譲渡された米国特許出願第11/448,486号、SUPPORTSFORASSAYINGANALYTESANDMETHODSOFMAKINGANDUSINGTHEREOFという発明の名称の米国特許公報第2007-0154348号に開示されている。"