"イネ科植物種子のアルコール抽出物の分配クロマトグラフィーのピーク成分を有効成分として含有する抗肥満剤。前記イネ科植物がコムギ属の植物である請求項1記載の抗肥満剤。前記アルコールがエタノールである請求項1又は2に記載の抗肥満剤。前記ピーク成分が、担体としてシリカゲル及び移動相としてヘキサン-酢酸エチル混合溶媒を用いた際のピーク成分である、請求項1~3のいずれか一項に記載の抗肥満剤。脂肪蓄積抑制作用を有するものである請求項1~4のいずれか一項に記載の抗肥満剤。従って、本発明の目的は、日常的に摂取しやすく、抗肥満効果が高く、しかも、用量と活性に相関性があって効果が実感しやすく、かつ安全性が高い抗肥満剤を提供することにある。本発明者らは鋭意検討の結果、後述する試験例で示すように、イネ科植物種子の単なる抽出物中には、脂肪蓄積抑制作用を有する成分とともに、これを阻害する成分も含まれているため、抽出物の適用量を増加させると、逆に脂肪蓄積が増加することを見出した。そのため、例えば特許文献1に記載のイネ科植物の抽出物を有効成分とするPPARリガンド剤は、PPARリガンド活性を示したとしても、脂肪蓄積抑制活性は示さないと考えられる。そして、本発明者らはさらに検討を進めた結果、分配クロマトグラフィーを用いてイネ科植物種子の抽出物の精製処理を行って有効成分を濃縮することにより、極めて効果の高い脂肪蓄積抑制剤を得ることに成功し、本発明に到達した。即ち、本発明は、イネ科植物種子のアルコール抽出物の分配クロマトグラフィーのピーク成分を有効成分として含有する抗肥満剤を提供するものである。本発明によれば、日常的に摂取しやすく、抗肥満効果が高く、しかも、用量と活性に相関性があって効果が実感しやすく、かつ安全性が高い抗肥満剤を提供することができる。以下、本発明の抗肥満剤について、好ましい実施形態に基づき詳細に説明する。本発明の抗肥満剤に用いるイネ科植物としては、特に制限されないが、例えば、小麦、デュラム小麦、ライ麦、ライ小麦、大麦、オーツ麦、はと麦、トウモロコシ、イネ、ヒエ、アワ、キビなどが挙げられ、高い活性が得られる点から、小麦、デュラム小麦等のコムギ属の植物が好ましく、小麦がさらに好ましい。これらは単独で用いてもよいし、2種以上を組み合わせて用いてもよい。イネ科植物種子としては、任意の形態のイネ科植物種子でよく、例えば、イネ科植物種子好ましくは種子外皮;糟糠類そのもの;当該イネ科植物種子を切断、粉砕若しくは粉末化したもの;当該イネ科植物種子を乾燥したもの;当該イネ科植物種子を乾燥後粉砕若しくは粉末化したものなどでもよい。イネ科植物種子外皮を含む好適な例としては、ふすま、末粉、籾殻、ぬかなどが挙げられるほか、外皮を伴った種子も挙げられる。アルコールによる抽出方法は特に制限されないが、上記各種形態のイネ科植物種子を、アルコール中に浸漬、攪拌または還流などする方法、ならびに超臨界流体抽出法などが挙げられる。アルコール中に浸漬、攪拌または還流などする方法の場合、抽出温度は2~100°Cが好ましく、抽出時間は30分~72時間が好ましく、アルコール使用量は、イネ科植物種子100質量部に対し50~2000質量部が好ましい。抽出に用いることができるアルコールとしては、例えば、メタノール、エタノール、n-プロパノール、イソプロパノール、n-ブタノールなどの1価の低級アルコール好ましくは炭素原子数1~4のもの、および1,3-ブチレングリコール、プロピレングリコール、グリセリンなどの多価アルコールなどの室温25°Cで液体であるアルコールが挙げられ、操作性や環境性の点から、エタノールが好ましい。また、上記アルコールには、さらに水性成分水、純水、蒸留水、水道水、酸性水、アルカリ水、中性水などが含まれている含水アルコールも包含される。含水アルコール中のアルコール含有量は、通常70体積以上、好ましくは80体積以上、より好ましくは90体積以上であるのが望ましい。本発明において、分配クロマトグラフィーは、本発明に係る有効成分が得られる手法であればその種類は問わないが、移動相として非水系溶媒を用いる順相クロマトグラフィー法が好ましく、オープンカラム法、中圧カラム法、高速液体クロマトグラフィーなどの方法を適宜選択することができる。移動相としては、メタノール、エタノール、n-プロパノール、イソプロパノール、n-ブタノールなどの1価の低級アルコール好ましくは炭素原子数1~4のもの、および1,3-ブチレングリコール、プロピレングリコール、グリセリンなどの多価アルコールなどの室温25°Cで液体であるアルコール;ジエチルエーテル、プロピルエーテルなどのエーテル;酢酸ブチル、酢酸エチルなどのエステル;アセトン、エチルメチルケトンなどのケトン;ヘキサン;塩化メチレン;アセトニトリル;ならびにクロロホルムなどを挙げることができる。これらを単独で又は複数組み合わせて用いる。複数を組み合わせる場合、混合比を一定にするイソクラクティックモード及び混合比を変化させるグラジエントモードいずれも採用できる。担体としては、目的とする有効成分を担持-放出できる担体であればいずれも用いることができるが、一般的にはシリカゲル、ポリアクリルアミドゲル、デキストランゲルなどを挙げることができる。検出波長は、170~320nmであればよく、好ましくは190~280nmである。以上の中でも、担体としてシリカゲル、移動相としてヘキサン-酢酸エチル混合溶媒を用いた際のピーク成分を分取することが好ましく、特に、担体としてシリカゲル、移動相としてヘキサン-酢酸エチル混合溶媒をヘキサン大-少へのグラジエントモードで用い、検出波長254nmでのピーク成分を分取するのが、本発明に係る有効成分を効率よく得られるため、好ましい。本発明の抗肥満剤は、本発明に係る有効成分、ならびに必要に応じて薬学的に許容される種々の担体、賦形剤、その他の添加剤、その他の成分を含有するものである。本発明の抗肥満剤は、常法により製剤化することができ、その場合、本発明の抗肥満剤の剤型は、錠剤、散剤、顆粒剤、カプセル剤などの経口剤である。また、その他の成分としては、その他の薬効作用を有する成分、抗炎症薬、各種ビタミン類、生薬、ミネラル類を適宜配合することができる。本発明の抗肥満剤中の有効成分の含有量は、特に制限されるものではなく、抗肥満剤の剤型、投与または摂取する者の症状や年齢性別などによって適宜変化させることができ、ヒトを対象とする場合、通常、本発明の抗肥満剤の有効成分の投与量または摂取量が1人1日当たり0.01~10gとなるように含有させることが好ましい。本発明の抗肥満剤は、そのまま投与または摂取してもよいし、本発明の抗肥満剤を、飲食品または動物用飼料に添加して投与または摂取してもよい。添加対象の飲食品としては、パン類、麺類、タブレット、キャンディーなどの菓子類、清涼飲料、ジュース、栄養ドリンクなどの飲料などが挙げられるが、これらに限定されるものではない。飲食品への添加時機も、特に制限されるものではなく、飲食品の製造工程中に添加してもよく、製造された飲食品に添加してもよく、また動物用飼料の場合も同様である。以下、実施例を挙げて、本発明をさらに詳細に説明するが、本発明はこれらの実施例にのみ限定されるものではない。実施例1小麦種子2gを、マルチビーズショッカー多検体細胞破砕機/MB301S:安井器械株式会社製で粉砕した後、5倍量のエタノールを添加して、150rpm、室温の条件で、2時間振とう抽出した。次いで、3500rpm、室温の条件で、15分間遠心分離して、上清を遠心濃縮機で乾燥して、小麦エタノール抽出物を得た。次いで、この小麦エタノール抽出物を中圧クロマトグラフィーによって精製した。中圧クロマトグラフィー条件は下記の通りである。溶出開始後12~14分に出現するピーク成分を回収して、溶媒留去し、本発明の抗肥満剤3mgを得た。このときのクロマトグラムを図1に示す。なお、クロマトグラムの横軸は溶出開始からの時間分を表す。<中圧クロマトグラフィー条件>カラム:シリカゲルインジェクトカラムS、ハイフラッシュカラムM、60Å、40μm、山善株式会社移動相:ヘキサン/酢酸エチル体積比=90/10にて3分、80/20にて5分、60/40にて10分検出波長:254nm比較例1小麦種子200mgを、マルチビーズショッカー多検体細胞破砕機/MB301S:安井器械株式会社製で粉砕した後、5倍量のエタノールを添加して、150rpm、室温の条件で、2時間振とう抽出した。次いで、3500rpm、室温の条件で、15分間遠心分離して、上清を遠心濃縮機で乾燥した。得られた濃縮物の重量を測定して、160mg/mLとなるようにエタノールに溶解して、比較例組成物4.8mgを得た。比較例2小麦種子200mgを、マルチビーズショッカー多検体細胞破砕機/MB301S:安井器械株式会社製で粉砕した後、5倍量のヘキサンを添加して、150rpm、室温の条件で、2時間振とうして脱脂後、ヘキサンを除去した。5倍量のエタノールを添加して、150rpm、室温の条件で、2時間振とう抽出した。次いで、3500rpm、室温の条件で、15分間遠心分離して、上清を遠心濃縮機で乾燥した。得られた濃縮物の重量を測定して、87mg/mLとなるようにエタノールに溶解して、比較例組成物2.6mgを得た。試験例マウス前駆脂肪細胞3T3-L1を、10fetalbovineserumFBS、10U/mLpenicillin、10μg/mLstreptomycinを含むダルベッコ変法イーグル培地グルコース4.5g/L、DMEM、Sigma-Aldrich社製に、4×104cells/mLの密度で浮遊させ、24ウェルプレートに1mLずつ播種した。次いで、5CO2存在下、37°Cで、3日間の培養後、コンフルエントになったことを顕微鏡下で確認してから、脂肪細胞への分化を誘導するため、培地を10μg/mLインスリンヒト由来、250nMデキサメタゾン、500μM3-イソブチル-1-メチルキサンチンを含む10FBS-DMEM分化誘導培地に置換し、分化誘導2日後、培地を10μg/mLインスリンを含む10FBS-DMEM維持培地に置換して、さらに、6日間培養した。以上の培養において、実施例1の抗肥満剤または比較例1もしくは2の組成物を適宜エタノールに溶解し、乾燥固形分としての添加量が所定量図2-1および2-2の記載参照となるように、分化誘導培地および維持培地に添加して培養を行なった。なお、コントロールとして、実施例1の抗肥満剤ならびに比較例1および2の組成物をいずれも添加しない系での培養も行なった。脂肪細胞分化抑制作用の評価のため、分化誘導2日後の各培養細胞を光学顕微鏡下で観察した。その際の光学顕微鏡写真を図3に示す。なお、図3aは、コントロールの光学顕微鏡写真であり、図3bは、実施例1の抗肥満剤を0.04mg添加したときの光学顕微鏡写真であり、図3cは、比較例1の組成物を1.6mg添加したときの光学顕微鏡写真である。また、細胞内の脂肪蓄積抑制性の評価のため、維持培地での培養終了後の培養細胞内のトリグリセライドTG量を下記測定方法に従って測定した。実施例1の抗肥満剤を用いた場合の結果を図2-1に、比較例1または2の組成物を用いた場合の結果を図2-2に示す。なお、図2-1および2-2において、結果は、無添加コントロールにおけるトリグリセライド産生量を100とした相対値で表す。トリグリセライド量の測定方法培養後の3T3-L1細胞をPBS-500μL/wellで2回洗浄した後、2-プロパノール300μLを加えて、80rpmで20分間振とうして、細胞内のトリグリセライドを抽出した。抽出したトリグリセライド量を、トリグリセライドE-テストワコー和光純薬工業製を用いて定量した。図2-1から、本発明の抗肥満剤は、細胞内に蓄積するトリグリセライド量を減少させることができ、その効果は、添加量の増加に伴って大きくなることが明らかである。一方、図2-2から明らかな通り、比較例1または2の組成物、すなわち単なる抽出物では、本発明の抗肥満剤のような効果は認められず、むしろ、添加量の増加に伴って細胞内に蓄積するトリグリセライド量が増加してしまった。また、分化誘導によって脂肪細胞となった図3aの顕微鏡写真、および比較例1の組成物を添加した図3cの顕微鏡写真では、細胞内に多数の脂肪滴の蓄積が認められるが、本発明の抗肥満剤を添加した図3bの顕微鏡写真では、前駆脂肪細胞の脂肪細胞への分化が抑制され、細胞内に蓄積される脂肪滴が少ないことが明らかである。"