"微生物触媒を用いて、反応基質から化合物を製造する方法であって、前記微生物触媒を溶媒に懸濁した微生物触媒懸濁液を、供給用配管を介して反応槽内に供給する供給工程を有し、前記供給工程において、供給用配管における前記微生物触媒懸濁液の配管内線速度を0.02~0.13msとすることを特徴とする化合物の製造方法。前記微生物触媒懸濁液中、微生物触媒が乾燥重量として4~20質量の濃度で存在することを特徴とする請求項1に記載の製造方法。前記微生物触媒を反応槽に連続的に供給することを特徴とする請求項1または2に記載の製造方法。前記反応基質がニトリル化合物であり、化合物がアミド化合物であることを特徴とする請求項1から3のいずれか1項に記載の製造方法。本発明の目的は、高品質な化合物を得ることができる化合物の製造方法を提供することにある。また、不純物の少ないアミド化合物を得ることができるアミド化合物の製造方法を提供することにある。本発明者らは、上記課題を解決するために鋭意検討を行い、従来着目されなかった反応槽への微生物触媒懸濁液の供給工程に着目した。そして、該供給工程における微生物触媒の摩耗を抑制することで、高品質な化合物が得られるという知見を得た。本発明者らは、該知見に基づいて、微生物触媒懸濁液を反応槽まで供給するに際して、配管内線速度を、通常設定される線速度よりも遅い0.02~0.13m/sとすることで、高品質な化合物を製造できることを突き止め、本発明を完成させた。すなわち本発明は、微生物触媒を用いて、反応基質から化合物を製造する方法であって、前記微生物触媒を溶媒に懸濁した微生物触媒懸濁液を、供給用配管を介して前記微生物触媒懸濁液を反応槽内に供給する供給工程を有し、前記供給工程において、供給用配管における前記微生物触媒懸濁液の配管内線速度を0.02~0.13m/sとすることを特徴とする化合物の製造方法である。本発明の化合物の製造方法によれば、高品質な化合物を得ることができる。加えて、微生物触媒の沈降による損失を低減することができる。<化合物の製造方法>本発明の化合物の製造方法は、微生物触媒懸濁液を供給用配管を介して生体触媒懸濁液を反応槽内に供給する供給工程を有する。本発明の製造方法は、微生物触媒を用いるあらゆる化合物の製造、例えば、アルコール類やアミド類などの汎用化学品、抗生物質生理活性物質などの医薬品、その原料や中間体などの製造に適用が可能である。特にニトリル化合物からアミド化合物を製造する際に用いることが好ましい。アミド化合物の場合、具体的には、微生物触媒の存在下、水中でニトリル化合物を水和する反応によりアミド化合物水溶液を得る。ニトリル化合物からアミド化合物を製造する場合、微生物触媒によるニトリル化合物の水和反応は、常温、常法により行うことができる。ニトリル化合物がアクリロニトリルの場合、アクリロニトリルの水和反応は、例えば、以下のように行われる。本発明のアクリロニトリルの水和反応には、反応原料微生物触媒、アクリロニトリル、原料水を含むを反応槽に一度に全量仕込んでから反応させる方法回分反応、反応原料の一部を反応槽に仕込んだ後、連続的又は間歇的に残りの反応原料を供給して反応させる方法半回分反応、及び反応原料の連続的又は間歇的な供給と、反応混合物反応原料及び生成したアクリルアミドを含むの連続的又は間歇的な取り出しを行いながら、反応槽内の反応混合物を全量抜き出すことなく連続的に製造する方法連続反応のいずれの反応を適用することもできる。工業的にアクリルアミドを大量にかつ効率的に製造しやすい点で、連続反応が好ましい。また、反応槽は1つのみを使用してもよいし、複数個を併用してもよい。複数の反応槽を用いて連続的に反応を行う際には、微生物触媒、アクリロニトリルの供給は、反応の効率等を悪化させすぎない範囲内であれば、最も上流に位置する反応槽のみには限定されず、それよりも下流の反応槽に導入してもよい。本発明の製造方法における反応温度反応混合物温度は、限定はされないが、10~40°Cであることが好ましく、20~35°Cであることがより好ましい。反応温度が10°C以上であれば、微生物触媒の反応活性を充分に高められるだけでなく、冷却水温度を上げることができるため、冷凍機に替えて冷水塔を利用することができ、冷却水の冷却エネルギーを低減することができる。また、反応温度が40°C以下であれば、微生物触媒の失活を抑制しやすい。また、本発明の製造方法における反応時間は、限定はされないが、例えば、1~50時間であることが好ましく、より好ましくは3~20時間である。<微生物触媒>本発明における微生物触媒とは、反応基質から化合物を生産する能力のある酵素活性を有する微生物、または微生物の処理物である。本発明が、ニトリル化合物からアミド化合物を製造する場合、微生物触媒はニトリルヒドラターゼを有する微生物である。ニトリルヒドラターゼとは、ニトリル化合物をこれに対応するアミド化合物に変換する酵素である。ニトリルヒドラターゼとしては、例えば、バチルスBacillus属、ジオバチルスGeobacillus属、バクテリジュームBacteridium属、マイクロコッカスMicrococcus属、ブレビバクテリウムBrevibacterium属、コリネバクテリウムCorynebacterium属、ノカルディアNocardia属、シュードモナスPseudomonas属、ロドコッカスRhodococcus属、ミクロバクテリウムMicrobacterium属、ロドコッカスRhodococcus属、フザリウムFusarium属、アグロバクテリウムAgrobacterium属等に属する微生物由来のものが知られている。また、前記微生物由来のニトリルヒドラターゼ遺伝子を取得し、常法により、該遺伝子をそのまま、または人為的に改良して任意の宿主に該遺伝子を導入した形質転換体を用いることもできるMolecularCloning2ndEdition.ColdSpringHaborLaboratoryPress.1989参照。このような形質転換体としては、例えば、アクロモバクターAchromobacter属細菌のニトリルヒドラターゼで形質転換した大腸菌MT10770FERMP-14756特開平8-266277号公報、シュードノカルディアPseudonocardia属細菌のニトリルヒドラターゼで形質転換した大腸菌MT10822FERMBP-5785特開平9-275978号公報、ジオバチルスGeobacillus属細菌細菌のニトリルヒドラターゼで形質転換したロドコッカスロドクロウスRhodococcusrhodochrousM33VKMAc-1515DあるいはKCCM-10635国際公開第2006/062189号公報、ロドコッカスロドクロウスRhodococcusrhodochrous種のニトリルヒドラターゼ特開平4-211379号公報、で形質転換した微生物等が挙げられる。微生物触媒の形態としては、前記微生物等を定法に従い培養した培養液、培養液から分離し必要に応じて洗浄された休止菌体の形態が挙げられる。化合物の品質を考慮すると、本発明においては、培養液から分離し洗浄した休止菌体を用いることが好ましい。微生物触媒の調製は、本発明が、ニトリル化合物からアミド化合物を製造する場合、例えば、以下のように行われる。炭素源グルコース等の糖類、窒素源例えば、硫酸アンモニウム、塩化アンモニウム、硝酸アンモニウム等の無機窒素源;酵母エキス、ペプトン、肉エキス等の有機窒素および必要に応じて無機塩類、金属塩、ビタミン等を添加した培地中で、20~40°C、pH5~9でニトリルヒドラターゼ産生微生物を培養する。培養は、適宜、振盪培養または回転培養としてもよい。培養終了後、菌体を有機酸水溶液で洗浄し、微生物触媒を調製する。<反応基質>本発明で用いられる反応基質とは、微生物触媒によって化合物が製造され得るものであればよい。反応基質はカウンターイオンとの塩であってもよい。製造される化合物がアミド化合物である場合、反応基質はニトリル化合物である。本発明におけるニトリル化合物とは、ニトリルヒドラターゼの作用によりアミド化合物に変換されるものである。ニトリル化合物としては、例えば、アセトニトリル、プロピオニトリル、サクシノニトリル、アジポニトリル等の脂肪族飽和ニトリル;アクリロニトリル、メタアクリロニトリル等の脂肪族不飽和ニトリル;ベンゾニトリル、フタロジニトリル等の芳香族ニトリル;3-シアノピリジン、2-シアノピリジン等の複素環式ニトリルが挙げられる。<微生物触媒懸濁液>微生物触媒懸濁液とは、上記微生物触媒を溶媒に懸濁させた懸濁液である。微生物触媒を懸濁させる溶媒は特段の限定はされないが、有機酸水溶液に懸濁することが好ましい。この有機酸水溶液としては、酵素活性を阻害しない有機酸水溶液であれば特に限定されない。例えば、アクリル酸、ギ酸、酢酸、プロピオン酸、酪酸、シュウ酸、カルボン酸等が挙げられ、製造する化合物に適した有機酸を適宜選択することができる。例えば、アミド化合物を製造する場合には、特開2002-281994に記載の方法を用いることができる。培養液から分離し洗浄した休止菌体を化合物製造に用いる場合、懸濁させる休止菌体の乾燥菌体濃度は、乾燥菌体として4質量以上、好ましくは5質量以上である。但し、菌体濃度が20質量を超えると、菌体懸濁液の流動性が低下するために液体としての取り扱いが困難になる。従って、菌体懸濁液の濃度は、乾燥菌体として4~20質量、好ましくは、5~15質量、より好ましくは、5~10質量、更に好ましくは、8質量である。ここでの休止菌体の乾燥菌体濃度は、菌体懸濁液に含まれる菌体の乾燥質量の比率により表され、具体的には、菌体懸濁液を120°Cの乾燥機で3時間乾燥させた時の乾燥前後の質量比百分率:菌液乾燥残渣濃度と、菌体懸濁液を微生物菌体層と実質的に菌体を含まない液層に分離した際の該液層を同様に乾燥させた時の乾燥前後の質量比百分率:上清塩濃度を以下の式に代入することにより求められる:微生物触媒懸濁液は、反応槽への懸濁液の供給に支障が可能な粘度であればよく、特段の限定はされないが、通常、25°Cでの粘度が10000cp以下であり、好ましくは1,000cp以下であり、より好ましくは100cp以下である。粘度が極端に高い場合には、供給用配管を介しての反応槽への微生物触媒の供給が困難になったり、高品質の化合物が得られない場合がある。<反応槽への微生物触媒懸濁液の供給工程>反応槽への微生物触媒懸濁液の供給工程は、供給用配管を介して行う。供給用配管は、微生物触媒懸濁液の供給量に応じた適当な管径を有する管を用いることができる。また、化合物の製造において、実質的に影響を及ぼさない材料で形成することができる。このような材料としては、製造する化合物がアミド化合物の場合には、ステンレス、銅、ポリエチレン、ポリプロピレン、及びフッ素系樹脂などが挙げられる。本発明の製造方法では、供給工程において、供給過程における微生物触媒の磨耗を抑制するために、配管内線速度を0.13m/s以下で行う。すなわち、微生物触媒の摩耗を抑制することで、高品質の化合物を製造することができる。また、供給過程における微生物触媒の配管内での沈降を抑制するために、配管内線速度を0.02m/s以上で行う。すなわち、反応槽に供給されない微生物触媒を抑制することで、経済的に化合物を製造することができる。したがって、反応槽への微生物触媒懸濁液の供給工程では、供給用配管における微生物触媒懸濁液の配管内線速度は、0.02~0.13m/sであり、好ましくは0.05~0.10m/s、より好ましくは0.05~0.09m/sである。なお、配管内線速度は次式で表される。ここでの配管内線速度とは、微生物触媒懸濁液を保存する微生物触媒貯槽と、反応槽とをつなぐ供給用配管において、その全長の内80以上の長さを占める、同一の配管内径をもつ配管内での線速度を指し、触媒貯槽、反応槽、微生物触媒を供給するために使用する移送ポンプ等と配管とを接続するフランジや異径ユニオンなどの接続部分を除く。本発明の供給工程において、微生物触媒懸濁液は触媒貯槽に貯留され、供給用配管を介して触媒貯槽から反応槽内に供給される。微生物触媒懸濁液が、触媒貯槽から反応槽に供給されるまでの微生物触媒懸濁液の移送時間は、供給工程での微生物触媒の供給配管内での沈降や腐敗を抑制するために、短時間であることが好ましく、2時間以内とすることがより好ましい。なお、化合物製造における反応様式が、連続反応である場合においては、触媒貯槽と反応槽とをつなぐ供給配管内での微生物触媒の滞留時間を2時間以内とすることが好ましい。本発明の供給工程において、触媒貯槽から反応槽内に添加されるまでの微生物触媒懸濁液の温度は、室温で可能である。但し供給過程での微生物触媒の失活や腐敗を抑制するには低温であることがより好ましい。具体的には氷点~35°C、好ましくは氷点~30°C、より好ましくは氷点~20°C、さらに好ましくは氷点~10°Cである。ここで、氷点とは、微生物触媒懸濁液の固体状態と液体状態の平衡温度を意味し、微生物触媒懸濁液の組成や配管内の圧力によって変化する温度である。本発明の供給工程において、触媒貯槽から反応槽内に添加されるまでの微生物触媒懸濁液の温度が上昇することを防ぐために、供給用配管に断熱材保冷材などを用いることが好ましい。以上説明した本発明の化合物の製造方法にあっては、微生物触媒貯槽から反応槽まで供給するに際して、供給用配管における配管内線速度を0.02~0.13msとすることで、微生物触媒の磨耗を抑えることができ、結果、高品質の化合物を提供することができる。特に、アミド化合物を製造する場合には、上記配管内線速度とすることで、微生物触媒に由来する不純物の発生を抑制できる。また、微生物触媒の配管内での沈降が抑制され、微生物触媒を有効に利用でき、経済的な化合物の製造が可能になる。以下、実施例及び比較例を示して本発明を詳細に説明する。ただし、本発明は以下の記載によっては限定されるものではない。[実施例1]1微生物触媒懸濁液の調製:ニトリルヒドラターゼ活性を有するロドコッカスロドクロウスRhodococcusrhodochrousJ-1株FERMBP-1478を、グルコース2質量、尿素1質量、ペプトン0.5質量、酵母エキス0.3質量、塩化コバルト0.05質量を含む培地pH7.0により好気的に培養した。培養終了後、培養液をクロスフロー型中空糸膜モジュール株式会社クラレ製MLE7101に通して循環濾過し、濾液の量に対応する量の0.1質量のアクリル酸ナトリウム水溶液pH7.0を連続的に培養液に供給して洗浄を行った。洗浄後、前記アクリル酸ナトリウム水溶液の供給を停止した状態でろ過を継続し、乾燥菌体濃度が5質量となるまで濃縮したものを、微生物触媒懸濁液とした。この微生物触媒懸濁液の粘度を25°Cで測定したところ10cpであった。アクリルアミドの生成ジャケット冷却器付反応槽槽内径:0.8m、高さ:1.4mを4槽直列に連結した。第1槽目に、50mMリン酸緩衝液pH7.0を50.6L/hr、アクリロニトリルを27.1L/hr、及び菌体懸濁液を690g/hrで連続的に添加し、第2槽目に、アクリロニトリルのみを11.6L/hrで連続的に添加した。菌体懸濁液の供給用配管長さは2mとし、配管内径は1.6mmとした線速度0.1m/s相当。第1槽から第4槽までの各槽の反応液量を500Lに調整し、第1槽から第4槽までの反応液温度がそれぞれ22°C、23°C、24°C及び25°Cとなるようにジャケットの冷却水10°Cを用いて温度制御した。2枚パドル翼翼径:350mm、翼幅:100mmを用いて、第1槽から第4槽までの全ての反応器における反応液流体あたりの攪拌動力を0.08kW/m3となるように調整したフルード数:0.057。ただし、反応液流体あたりの攪拌所要動力は、各反応器における攪拌所要動力を液量500L=0.5m3で除して算出した。反応開始から4日後、第4槽から流出してくる反応液を、ガスクロマトグラフィーカラム:Waters社製、PoraPak-PS、1m、180°C;キャリアガス:ヘリウム;検出器:FIDにより測定した。その結果、未反応のアクリロニトリルは検出されず、50.5のアクリルアミドが検出された。この反応液の一部を採取し、孔径0.45μmのフィルターでろ過することで、菌体を除き、アクリルアミド水溶液を得た。得られたアクリルアミド水溶液は、無色透明であった。[比較例1]ステンレス配管の配管内径を0.8mm線速度0.38m/s相当とした以外は、実施例1と同様にして、菌体を除いたアクリルアミド水溶液を得た。得られたアクリルアミド水溶液は、透明であったがやや黄色味を帯びていた。送液過程での微生物触媒の破砕などにより、比較例1では製造されたアクリルアミド水溶液は着色しており、好ましくない。[参考実施例1]次に、微生物触媒懸濁液を送液した際の、微生物触媒濃度について実験を行った。1微生物触媒の調製:乾燥菌体濃度が12質量となるまで濃縮した以外は、実施例1と同様にして、微生物触媒懸濁液を得た。この微生物触媒懸濁液の粘度を25°Cで測定したところ250cpであった。2微生物触媒懸濁液の送液:参考実施例1で用いた微生物触媒懸濁液の供給系を模した装置を図1に示す。長さが1mのステンレス配管内径8mm3本を、90°エルボウシオZユニオンFLZ-8-00PPで接続した。前記1で調製した微生物触媒懸濁液を2年7ヶ月冷蔵保存した後、微生物触媒貯槽に加え、チューブポンプポンプ:ColeParmer755370、ヘッド:ColeParmer7720162により、ステンレス配管内に送液した。このとき、ステンレス配管内の微生物触媒懸濁液の線速度が0.09msとなるように送液した。3微生物触媒懸濁液の濃度測定:ステンレス配管より吐出された微生物触媒懸濁液を回収し、希釈した後に、波長630nmにおける濁度を測定することで、微生物触媒懸濁液中における微生物触媒の濃度を測定した。4微生物触媒懸濁液から流出する不純物濃度測定:前記3で希釈した微生物触媒懸濁液を遠心分離4°C、12700×G、5minし、微生物触媒を沈降させ、上清を得た。上清を分光光度計日立計器製、GeneSpecIIIを用いて、波長260nmにおける吸光度を測定することで、微生物触媒懸濁液から流出する不純物濃度を測定した。[参考比較例1]ステンレス配管内の線速度が0.41msとなるように送液した以外は、参考実施例1と同様にして、送液後の微生物触媒懸濁液中における微生物触媒濃度と、微生物触媒懸濁液から流出する不純物濃度を測定した。[参考比較例2]ステンレス配管内の線速度が0.003msとなるように送液した以外は、参考実施例1と同様にして、送液後の微生物触媒懸濁液中における微生物触媒濃度と、微生物触媒懸濁液から流出する不純物濃度を測定した。参考実施例1、並びに参考比較例1及び2の測定結果を表2に示す。なお、微生物触媒濃度および不純物濃度は、参考実施例1での測定結果を1とした相対値で示す。送液過程で微生物触媒が破砕されたためか、線速度を0.41msとした参考比較例1では、参考実施例1よりも不純物濃度が高かった。この線速度で微生物触媒懸濁液を供給した場合、製品となるアミド化合物濃度中に、微生物触媒由来の不純物濃度が増加し、好ましくない。一方、線速度を0.003msとした参考比較例2では、送液過程で微生物触媒が沈降したためか、送液後の微生物触媒懸濁液濃度が、参考実施例1よりも低かった。この線速度で微生物触媒懸濁液を供給した場合、微生物触媒を送液過程で損失することとなり、非経済的なアミド化合物製造法となる。[参考実施例2]3ヶ月冷蔵保存した微生物触媒懸濁液を用いた以外は、参考実施例1と同様にして、送液後の微生物触媒懸濁液中の微生物触媒濃度を測定した。また、送液後の微生物触媒懸濁液について、アクリルアミド生成反応速を測定し、ニトリルヒドラターゼ活性を算出した。測定は、適宜希釈した微生物触媒懸濁液を調製し、ここに基質のアクリロニトリル水溶液を添加して開始し、10°C10分の振盪ののち、微生物触媒を濾過分離して反応を停止し、ガスクロマトグラフィGC14B、島津製作所で分析した。分析条件は、PorapackPSウォーターズ社を充填した1mガラスカラムを用い、カラム温度210°C、検出器は230°CのFIDを使用した。[参考実施例3]ステンレス配管内の線速度が0.05msとなるように送液した以外は、参考実施例2と同様にして、送液後の微生物触媒懸濁液中の微生物触媒懸濁液濃度とニトリルヒドラターゼ活性を測定した。[参考比較例3]ステンレス配管内の線速度が0.17msとなるように送液した以外は、参考実施例2と同様にして、送液後の微生物触媒懸濁液中の微生物触媒懸濁液濃度とニトリルヒドラターゼ活性を測定した。[参考比較例4]ステンレス配管内の線速度が0.01msとなるように送液した以外は、参考実施例2と同様にして、送液後の微生物触媒懸濁液中の微生物触媒懸濁液濃度とニトリルヒドラターゼ活性を測定した。測定結果を表3に示す。なお、微生物触媒懸濁液濃度および不純物濃度は、参考実施例2での測定結果を1とした相対値で示す。送液過程での微生物触媒の破砕や沈降により、参考比較例3、参考比較例4では送液後の微生物触媒濃度とニトリルヒドラターゼ活性が低く、微生物触媒を送液過程で損失することとなり、非経済的なアミド化合物製造法となる。"