"試料中のシナプス前神経筋遮断物質の含量の測定方法であって、以下の行程:i筋肉組織の収縮を誘導するために必要な最小電位Vmを測定すること、ここで、上記筋肉組織は運動神経を介して電気刺激装置に結合されている;iiシナプス前神経筋遮断物質を含む試料を添加すること;iii少なくともVmに等しい電位において、一定の時間間隔において筋肉組織を電気刺激すること;iv当該試料により誘導された効果と、基準物質により誘導された効果を比較し、そして、これにより試料中のシナプス前神経筋遮断物質の含量を測定すること;を含んで成る方法。上記筋肉組織がバッファー中に浸漬される、請求項1に記載の方法。上記バッファーが生理バッファーである、請求項2に記載の方法。上記バッファーがエネルギー源を含んで成る、請求項2又は請求項3に記載の方法。上記エネルギー源がATPエネルギー源である、請求項4に記載の方法。上記バッファーが酸素添加される、請求項2~5のいずれか一項に記載の方法。上記バッファーがグルコースを含む酸素添加した生理バッファーである、請求項2~6のいずれか一項に記載の方法。請求項1に記載の行程iiiにおける電気刺激が、少なくとも過最大電位VSMと等しい電位において行われる、上記請求項のいずれか一項に記載の方法。上記誘導される効果が、筋肉組織の麻痺に対する時間である、上記請求項のいずれか一項に記載の方法。上記誘導される効果が、筋肉組織の収縮速度における変化である、請求項1~8のいずれか一項に記載の方法。上記誘導される効果が、筋肉組織の収縮距離における変化である、請求項1~8のいずれか一項に記載の方法。上記誘導される効果が、筋肉組織の収縮力における変化である、請求項1~8のいずれか一項に記載の方法。上記誘導される効果が、筋肉組織の終板電位、又は微小終板電位における変化である、請求項1~8のいずれか一項に記載の方法。請求項1に記載の行程iiiにおける電気刺激が、刺激が及ぼされない時間tp持続する周期により相互から分離された時間ts持続する刺激を含んで成り、上記時間tsが50μs~500msであり、上記時間tpが0.1~10sであり、そしてts/tp比が1:2~1:50000である、上記請求項のいずれか一項に記載の方法。上記シナプス前神経筋遮断物質がボツリヌストキシンである、上記請求項のいずれか一項に記載の方法。上記ボツリヌストキシンが、ボツリヌストキシンA型、ボツリヌストキシンB型、及びボツリヌストキシンF型から選択される、請求項15に記載の方法。上記ボツリヌストキシンが、ボツリヌストキシンA型、及びボツリヌストキシンB型から選択される、請求項16に記載の方法。上記ボツリヌストキシンがボツリヌストキシンA型である、請求項17に記載の方法。上記シナプス前神経筋遮断物質がブンガロトキシンである、請求項1~14のいずれか一項に記載の方法。上記ブンガロトキシンが、α-ブンガロトキシンである、請求項19に記載の方法。試料中のシナプス前神経筋遮断物質に対する中和抗体の含量の測定方法であって、以下の行程:i筋肉組織の収縮を誘導するために必要な最小電位Vmを測定すること、ここで、上記筋肉組織は運動神経を介して電気刺激装置に結合されている;iiシナプス前神経筋遮断物質に対する中和抗体、及び測定した量の上記シナプス前神経筋遮断物質を含有する試験すべき試料混合物を添加すること、ここで、上記混合物は0~45°Cで約15~約120分間前もってインキュベートされている;iii少なくともVmに等しい電位において、一定の時間間隔において筋肉組織を電気刺激すること;iv当該混合物により誘導された効果と、測定した量の上記シナプス前神経筋遮断物質により誘導された効果を比較し、そして、これにより試料中のシナプス前神経筋遮断物質に対する中和抗体の含量を測定すること;を含んで成る方法。上記誘導される効果が筋肉組織の収縮力の変化である、請求項21に記載の方法。上記シナプス前神経筋遮断物質がボツリヌストキシンである、請求項21又は請求項22に記載の方法。上記ボツリヌストキシンがボツリヌストキシンA型である、請求項23に記載の方法。以下の実施例において、1Speywoodユニット又は1Uは、マウス中のボツリヌストキシンのメジアン腹腔内LD50用量に対応する。実施例1:ボツリヌストキシン含有試料使用される材料a使用されるバッファー溶液:リリーズLilliesリンゲルバッファーとして後に識別される改変リンゲルバッファーは、水中で以下を希釈することにより調製される:使用の直前において、グルコース11mMを、前に調製された溶液に添加し、そして95O2と5CO2のガス混合体を上記バッファー溶液に通気させ、リリーズリンゲルバッファーを産出する。後に言及するリン酸バッファー生理食塩水溶液PBSは、Sigmaにより供されるタブレットを200mlの水に添加し溶解することにより調製し、当該バッファーは以下の特徴を供する。b組織の単離:ウィスターラット体重約275gを、CO2暴露意識を失わせるために約3分間後に、頚椎脱臼により犠牲にする。胸郭を各動物から解剖し、リリーズリンゲルバッファー中に置き、そして実験場所に運ぶ行程時間:約15分。これらの胸郭は、脊柱にそって注意深く解剖することにより2つの切片に分離させる。当該組織を、実験手順を行う前に酸素添加バッファー中に保存する。c筋肉の収縮を誘導するために必要な最小電位Vmの測定:各肋間調製物半分の胸郭を、リリーズリンゲルバッファーを含むペトリ皿に置く。各調製物のために、約1~2mmの神経束を明らかにするために1つの肋間神経を注意深く解剖する。解剖後、上記調製物は、10mlの酸素添加リリーズリンゲルバッファーを含むペトリ皿に戻す前に、新鮮な酸素添加リリーズリンゲルバッファー中に約15~20分おいて回復させることができる。解剖した肋間神経をそれから吸引電極を介して、培地中におかれた回帰return接触電極を有する刺激装置と接続する。細胞収縮を誘導するために必要な最小電位Vmを測定する。刺激が10V以下に達することができない場合、他の神経を解剖し、そして接続の前に調製物を回復させる。試料中に含有されるボツリヌストキシントキシンの含量の測定方法上記神経をパルス電位5~9V、1Hzで刺激し、当該選択された電位は、刺激及び筋肉収縮を達成するために必要な閾電位Vmより常に1V上にする。上記切片のビデオ顕微鏡観察は、組み合わせたTV/ビデオレコーダーに接続したJVCTKC1481EGビデオカメラを伴うNilkonSMZ800ステレオマイクロスコープで行う。Dysport登録商標活性成分:ボツリヌストキシンA型をPBS中に、直接肋間調製物10mlのバッファー中に僅かに浸されている上に加える。ml用量当たり50SpeywoodユニットUのために、500Uのトキシンを培養皿10mlバッファーに添加し、50U/ml用量の最終濃度を得る。10U/ml用量のために、100Uを、上記培養皿に添加し、10U/ml用量の最終濃度を得る。1U/ml用量のために、10Uを、上記培養皿に添加し、1U/ml用量の最終濃度を得る。プラセボボツリヌストキシンが存在しないことを除き、Dysport登録商標と同じ組成を有するのために、バイアル0.2mlのPBS中の全ての内容物を培養皿に添加する。データ分析記録したビデオクリップを、MPEGファイルに変換する。後の分析を補助するために、各ムービーを2分間のセクションにカットし、そしてこれらのセクションを、Adobe登録商標Premiere登録商標5.1ソフトウェアを使用して開始速度の1/2にスローにする。それから、分析は10秒間半分のスピードのクリップでは20秒間中の単収縮の回数をカウントすることにより行い、そして当該10秒間にわたる単収縮の回数を平均化し、単収縮の頻度の値を得る。また、収縮距離は、重ねられたスケールバー任意単位-通常6~7ポイントスケールを伴うムービーを再生することにより測定でき、当該データを平均化し、各10秒間にわたる収縮距離を得ることができ、あるいは、上記距離は開始収縮距離と比較される。上記実験は一定回数繰り返し0U/ml:n=5;1U/ml:n=5;10U/ml:n=4;50U/ml:n=4、そして当該結果を平均化する。結果図1から、Dysport登録商標濃度の関数として、相対的な収縮距離即ち、トキシンの不存在下における収縮距離により得られたトキシンの存在下における収縮距離が、多かれ少なかれ急速に減少されることを示す。また、Dysport登録商標濃度の関数として観察できるように、図2は、距離単収縮寿命即ち、当該トキシンが添加されてから、収縮距離がゼロになるまでに必要とされる時間に関する結果が、筋肉収縮距離において用量依存的な減少を示すことが解る。図3に示される通り、単収縮頻度寿命即ち、当該トキシンが添加されてから、単収縮頻度がゼロになるまでに必要とされる時間もまた、用量依存的な方法において、Dysport登録商標により減少される。実施例2:α-ブンガロトキシン含有試料実施例1のために説明した同じ手順を使用して、Dysport登録商標の代わりにα-ブンガロトキシンを、21μMn=3の濃度において試験する。α-ブンガロトキシン調製物の平均単収縮寿命は、225s±標準誤差93、n=3、及び238s±標準誤差93、n=3であり、それぞれ収縮距離及び単収縮頻度から計測される。実施例3:延長生命系材料調製a使用されるバッファー溶液:当該実施例において使用される改変リンゲルバッファー又はリリーズリンゲルバッファーは1リットルの水に以下を希釈することにより調製される:ゼラチン2gNaHPO4,2H2O10gb組織の単離:オスのウィスターラット約230~300gを、CO2暴露意識を失わせるために約3分間後に、頚椎脱臼により犠牲にする。胸郭を各動物から解剖し、リリーズリンゲルバッファー中に置き、そして実験場所に運ぶ行程時間:約20分。これらの胸郭は、脊柱及び胸骨にそって注意深く解剖することにより2つの切片に分離させる。実験手順の前に、2つの半分の胸郭を約300mlの継続的に酸素添加したリリーズリンゲルバッファー中に少なくとも30分間保存する。c筋肉の収縮を誘導するために必要な最小電位Vmの測定:1つの半分の胸郭を、約10mlのリリーズリンゲルバッファーを含むペトリ皿に置き、約1~2mmの神経束を明らかにするように1つの肋間神経を注意深く解剖する。それから、当該神経を、吸引電極を介して培地中におかれた回帰return接触電極を有する刺激装置と接続する。細胞収縮を誘導するために必要な最小電位Vmを測定する。刺激が10V1Hz、200μ秒持続時間以下に達することができない場合、他の神経を解剖する。神経を有する2-肋骨切片を半分の胸郭から解剖し、圧力変換トランスデューサーに後で付着するための2つの肋骨の端のいずれかを残せる程度に過剰な筋肉組織を確保する。d圧力変換トランスデューサーへの付着:図4に示されるスタティックバスシステムに関して、3つの金属ステーブルが、2つの肋骨のいずれかの端上の非刺激筋肉組織に付着された。2-肋骨切片5の一方の端は、3つのステーブルを介して、固定した脚4に付着させ、他の端は自由な脚に付随させた。上記固定した脚は、その場所にしっかりと固定し、一方自由な脚は、約4cmの綿針7を介して、圧力変換トランスデューサーに付着させた。当該固定された組織を約500mlのリリーズリンゲルバッファーに浸し、そして回帰電極2を当該バッファー中に置いた。解剖した肋間神経を、正吸引電極3を介して、刺激装置に接続した。また、図4に示された当該システムは、CO2/O2ガス入り口6を含む。試料中に含まれるボツリヌストキシンの含量の測定方法上記2-肋骨組織切片を、連続パルス刺激を使用して毎回30秒間の最初の5秒間は1パルス/秒、約90分間、15V、200μ秒持続時間で刺激する。所望されるトキシンの濃度は、適用の直前にGPB中で再構成させる。当該トキシン伝達は以下2つの方法のひとつを介する:A直接的適用-上記2-肋骨切片を、組織バス中のいくらかのバッファーを除去することにより、空気/液体界面に暴露させる。ハミルトンシリンジを使用して、トキシンを滴下法において、暴露した組織に直接的に適用する。オリジナルリンゲルバッファーでカバーする前に、トキシンを取り込むことができるように、上記組織を更に15分間暴露したままにする。必要であれば、いずれかの取り外された、解剖された神経を吸引電極に再接続させる。B浸漬-ハミルトンシリンジを使用して、トキシンを、2-肋骨切片に近接する但し、直接その上ではない組織バスに直接的に適用する。圧力変換トランスデューサーから記録された単収縮力の読みは、GrassInstrumentsAC/DCストレインゲージ増幅器を通して増幅させ、それから、シグナルは、GrassPolyVIEWTMソフトウェアを使用して記録される。データ分析記録されたトレースから、一定のパーセンテージにより減少させるように、初期の最大単収縮力計測にかかった時間トキシン/プラセボの添加後を計測した。当該実験は、一定の回数繰り返す直接的適用法:プラセボ:n=4;500U:n=8;1000U:n=5;1500U:n=11;浸漬法:プラセボ:n=3;3U/ml:n=5;6U/ml:n=2,12U/ml:n=2。プラセボ及び低レベルのトキシンに暴露した場合の組織の長い寿命のために、単収縮力における90減少において示された値は、一定の減少速度と仮定するデータの推定に基づく結果が予想される。結果A直接的適用法図5において示されるように、時間による単収縮力の計測におけるゆっくりとした減少は、プラセボの添加後を含む全ての試料において記録される。プラセボの暴露後、約12時間後に、最大単収縮力における50減少が観察される。比較において、1500Uのトキシンに暴露されたこれらの組織試料中、単収縮はより急速に減少され、約5時間後、50減少に達する。B浸漬法図6において示されるように、単収縮力計測における減少は、プラセボの添加後に記録され、約20時間後に最大単収縮力における50減少が観察された。3ユニット/mlのトキシン溶液中の組織の浸漬は、単収縮力の50減少に達する13時間の刺激後に、単収縮力の速度を更に増加させた。より高いトキシン濃度では、用量依存型応答は、更に明らかである。理解されるように、反復可能な用量依存型トキシン誘導性の筋肉収縮の抑制は、トキシン伝達の直接適用法及び浸漬法の両方を使用して観察される。"