"血液由来の単核細胞集団中の接着細胞をメトキシエチルアクリレートaと、ジメチルアクリルアミドbの共重合体Aと、水膨潤性粘土鉱物及びシリカから選択される1種以上の無機材料Bとを含有する細胞培養基材上で、選択的に浮遊増殖させる接着細胞の培養方法。血液由来の単核細胞集団中の接着細胞をメトキシエチルアクリレートaと、ジメチルアクリルアミドbの共重合体Aと、水膨潤性粘土鉱物及びシリカから選択される1種以上の無機材料Bとを含有する細胞培養基材上で、選択的に浮遊増殖させ、次いで接着細胞を他の基材へ再播種し、接着増殖又は浮遊増殖させる接着細胞の培養方法。前記血液が、骨髄血、臍帯血又は末梢血である請求項1又は2記載の接着細胞の培養方法。請求項1~3のいずれかに記載の増殖方法で製造された接着細胞。血液由来単核細胞から接着細胞を選択的に浮遊増殖させるための細胞培養基材であって、メトキシエチルアクリレートaと、ジメチルアクリルアミドbの共重合体Aと、水膨潤性粘土鉱物及びシリカから選択される1種以上の無機材料Bとを含有する接着細胞の浮遊増殖用細胞培養基材。前記共重合体A中のメトキシエチルアクリレートaとジメチルアクリルアミドbのモル比b/aが、0.11~4.5の範囲にある請求項5記載の接着細胞の浮遊増殖用細胞培養基材。前記重合体Aと前記無機材料Bの質量比B/Aが、003~08の範囲にある請求項5又は6記載の接着細胞の浮遊増殖用細胞培養基材。本発明が解決しようとする課題は、細胞培養基材表面と血液由来単核細胞間の接着力を制御し、高い培養増殖性を有する血液由来単核細胞からの接着系細胞の選択的浮遊培養方法を提供することにある。本発明者等は、上記課題を解決すべく鋭意研究した結果、メトキシエチルアクリレートaと、ジメチルアクリルアミドbの共重合体Aと、無機材料Bとを含有する細胞培養基材の上では、血液由来単核細胞が優れた浮遊増殖性を有し、また、上記培養基材を用いた場合、基材表面と細胞間の接着力を低く維持しながら、血液由来単核細胞を培養することができ、更に、他の基材に再播種すると、浮遊増殖した血液由来単核細胞が成長因子を用いることなく効率よく接着できる、血液由来単核細胞からの接着細胞の培養方法を見出し、本発明を完成するに至った。即ち、本発明は、血液由来の単核細胞集団中の接着細胞をメトキシエチルアクリレートaとジメチルアクリルアミドbの共重合体Aと、水膨潤性粘土鉱物及びシリカから選択される1種以上の無機材料Bとを含有する細胞培養基材上で、選択的に浮遊増殖させる接着細胞の培養方法を提供する。また、本発明は、血液由来の単核細胞集団中の接着細胞をメトキシエチルアクリレートaとジメチルアクリルアミドbの共重合体Aと、水膨潤性粘土鉱物及びシリカから選択される1種以上の無機材料Bとを含有する細胞培養基材上で、選択的に浮遊増殖させ、次いで接着細胞を他の基材へ再播種し、接着増殖又は浮遊増殖させる接着細胞の培養方法を提供する。また、本発明は、骨髄血、臍帯血又は末梢血由来の単核細胞集団中の接着細胞の培養方法を提供する。また、本発明は、前記培養方法で製造された接着細胞を提供する。また、本発明は、血液由来単核細胞から接着細胞を選択的に浮遊増殖させるための細胞培養基材であって、メトキシエチルアクリレートaとジメチルアクリルアミドbの共重合体Aと、水膨潤性粘土鉱物及びシリカから選択される1種以上の無機材料Bとを含有する接着細胞の浮遊増殖用細胞培養基材を提供する。本発明の細胞培養基材の特徴は、上記メトキシエチルアクリレートaとジメチルアクリルアミドbの共重合体Aが血液由来単核細胞に対して低接着効果を付与し、無機材料Bの構成成分が細胞の増殖を担うことにあると推測される。加えて、本発明の細胞培養基材で培養された細胞は、他の基材へ再播種したときに良好な接着性を示す。ここで言う血液とは、ヒトまたはその他の動物の骨髄液、臍帯血液または末梢血液のことをいう。共重合体Aは主にイオン結合や水素結合などにより無機材料Bと相互作用し結合している。この結合力は強く、容易にポリマーと無機材料Bを引き離すことはできない。本発明の血液由来単核細胞からの接着系細胞の選択的浮遊培養方法は、細胞と培養表面の間に弱い接着力を維持しながら、高い増殖能を有し、培養した細胞を、他の基材へ再播種することで成長因子を使用することなく、細胞を容易に接着できる特徴を有する。また、本培養方法に用いられる培養基材は、γ線や電子線などの放射線滅菌が可能である特徴を有する。本発明の浮遊培養方法は、上記の特長を有するので、マクロファージ細胞および樹状細胞の増殖に利用することが出来、アレルギー性疾患、アルツハイマー型痴呆症をはじめ、白血病、リンパ腫、ホジキン病、非ホジキンリンパ腫、多発性骨髄腫、脳腫瘍、乳癌、子宮体癌、子宮頚癌、卵巣癌、食道癌、胃癌、虫垂癌、大腸癌、肝癌、肝細胞癌、胆嚢癌、胆管癌、膵臓がん、副腎癌、消化管間質腫瘍、中皮腫、喉頭癌、口腔癌口腔底癌、歯肉癌、舌癌、頬粘膜癌、唾液腺癌、副鼻腔癌上顎洞癌、前頭洞癌、篩骨洞癌、蝶型骨洞癌、甲状腺癌、腎臓癌、肺癌、骨肉腫、前立腺癌、精巣腫瘍、腎細胞癌、膀胱癌、横紋筋肉腫、皮膚癌、肛門癌、神経芽細胞腫、中枢神経癌、ウィルムス腫瘍、生殖細胞癌、軟組織肉腫、上皮性癌等の治療に有効に活用することが出来る。メトキシエチルアクリレートaと、ジメチルアクリルアミドbの共重合体Aの使用により、血液由来単核細胞の初期接着性を低く維持でき、且つ、細胞増殖性が良好な細胞培養基材が得られる。また、共重合体Aは、これらの細胞培養基材をポリスチレンなどのプラスチック製基材等の支持体の表面に積層させる場合は、両者間の接着性が強く、安定した製造ができる特徴も持っている。また、培養性や物性に影響を及ぼさない程度に、必要に応じてその他の共重合モノマーとして、例えば、スルホン基やカルボキシル基のようなアニオン基を有するアクリル系モノマー、4級アンモニウム基のようなカチオン基を有するアクリル系モノマー、4級アンモニウム基と燐酸基とを持つ両性イオン基を有するアクリル系モノマー、カルボキシル基とアミノ基とをもつアミノ酸残基を有するアクリル系モノマー、糖残基を有するアクリル系モノマー、また、水酸基を有するアクリル系モノマー、更にポリエチレングリコールのような親水性鎖とノニルフェニル基のような疎水基を合わせ持つ両親媒性アクリル系モノマー、N-置換メタアクリルアミド誘導体、N,N-ジ置換メタアクリルアミド誘導体、N,N’-メチレンビスアクリルアミドなどを併用することができる。本発明に用いる無機材料Bは、水膨潤性粘土鉱物及びシリカから選択される1種以上の無機材料である。水膨潤性粘土鉱物としては、層状に剥離可能な水膨潤性粘土鉱物が挙げられ、好ましくは水または水と有機溶剤との混合溶液中で膨潤し均一に分散可能な粘土鉱物、特に好ましくは水中で分子状単一層またはそれに近いレベルで均一分散可能な無機粘土鉱物が用いられる。また、本発明における水膨潤性粘土鉱物Bは、共重合体Aと三次元網目を形成できるものであることが好ましく、具体的にはナトリウムを層間イオンとして含む水膨潤性ヘクトライト、水膨潤性モンモリライト、水膨潤性サポナイト、水膨潤性合成雲母、等が挙げられる。これらの粘土鉱物を混合して用いても良い。本発明に用いるシリカSiO2としては、コロイダルシリカが挙げられ、好ましくは水溶液中で均一に分散可能で、粒径が10nm~500nmのコロイダルシリカ、特に好ましくは粒径が10~50nmのコロイダルシリカが用いられる。本発明の細胞培養基材において、共重合体A中のメトキシエチルアクリレートaとジメチルアクリルアミドbのモル比b/aが、0.11~4.5であることが好ましく、0.2~1がより好ましく、0.4~0.7が特に好ましい。モル比b/aがこの範囲であると、血液由来単核細胞に対し良好な増殖性を示すことができ、好ましい。また、本発明の細胞培養基材において、共重合体Aと無機材料Bとの質量比B/Aが、0.03~0.8であることが好ましく、0.05~0.3がより好ましく、0.07~0.1が特に好ましい。質量比B/Aがこの範囲であると、血液由来単核細胞に対し良好な培養性を示すことができ、好ましい。更に、本発明の細胞培養基材で浮遊培養した接着系細胞を、そのまま本発明の細胞培養基材で浮遊増殖させることも出来るし、または他の基材、例えば細胞培養処理済みポリスチレンディッシュへ再播種して接着細胞を得ることもできる。本発明の培養方法で製造された接着細胞は、初期に基材への強い接着を伴う増殖をさせないので、細胞の基底タンパクがトリプシンなどのタンパク質分解酵素でダメージを受けず、生体内の細胞形態により近い状態にあり、細胞活性も高く、移植後の定着性や治癒性が高いと考えられる。本発明の培養基材の製造方法は、メトキシエチルアクリレートaとジメチルアクリルアミドbの共重合体Aが、無機材料Bと相互作用し、有機無機複合体を形成できるものであれば、特に限定されない。例えば、メトキシエチルアクリレートaとジメチルアクリルアミドbと前記無機材料Bおよび重合開始剤とを水に混合し、支持体に塗布して、前記メトキシエチルアクリレートaとジメチルアクリルアミドbを共重合させることにより、共重合体Aと前記無機材料Bとの複合体Xの薄層を形成する製造方法が挙げられる。前記製造方法に用いる水は、モノマーa、bや無機材料Bなどを含むことができ、重合によって、物性のよい有機無機複合体が得られれば良く、特に限定されない。例えば水の他、水と混和性を有する溶剤及び/またはその他の化合物を含む水溶液であってよく、その中には更に、必要に応じて防腐剤や抗菌剤、抗生物質、着色料、香料、酵素、たんぱく質、コラーゲン、糖類、アミノ酸類、ペプチド類、DNA類、塩類、水溶性有機溶剤類、界面活性剤、高分子化合物、レベリング剤などを含むことができる。本発明に用いられる重合開始剤としては、公知のラジカル重合開始剤を適時選択して用いることができる。好ましくは水溶性または水分散性を有し、系全体に均一に含まれるものが好ましく用いられる。具体的には、重合開始剤として、水溶性の過酸化物、例えばペルオキソ二硫酸カリウムやペルオキソ二硫酸アンモニウム、水溶性のアゾ化合物、例えばVA-044、V-50、V-501いずれも和光純薬工業株式会社製の他、Fe2と過酸化水素との混合物などが例示される。触媒としては、3級アミン化合物であるN,N,N’,N’-テトラメチルエチレンジアミンなどは好ましく用いられる。但し、触媒は必ずしも用いなくてもよい。重合温度は、重合触媒や開始剤の種類に合わせて例えば0°C~100°Cが用いられる。重合時間も数十秒~数十時間の間で行うことが出来る。一方、光重合開始剤は、酸素阻害の影響を受けにくく、重合速度が速いため、重合開始剤として好適に用いられる。具体的には、p-tert-ブチルトリクロロアセトフェノンなどのアセトフェノン類、4,4’-ビスジメチルアミノベンゾフェノンなどのベンゾフェノン類、2-メチルチオキサントンなどのケトン類、ベンゾインメチルエーテルなどのベンゾインエーテル類、ヒドロキシシクロヘキシルフェニルケトンなどのα-ヒドロキシケトン類、メチルベンゾイルホルメートなどのフェニルグリオキシレート類、メタロセン類などが挙げられる。本工程に用いられる光としては、電子線、γ線、X線、紫外線、可視光などを用いることができるが、中でも装置や取り扱いの簡便さから紫外線を用いることが好ましい。照射する紫外線の強度は10~500mW/cm2が好ましく、照射時間は一般に0.1秒~200秒程度である。通常の加熱によるラジカル重合においては、酸素が重合の阻害因子として働くが、本発明では、必ずしも酸素を遮断した雰囲気で溶液の調製および紫外線照射による重合を行う必要がなく、空気雰囲気でこれらを行うことが可能である。但し、紫外線照射を不活性ガス雰囲気下で行うことによって、更に重合速度を速めることが可能で、望ましい場合がある。また、本発明の培養基材の第二の製造例としては、水溶液E中の前記無機材料Bの濃度が下記式1又は式2で表される範囲となるように、前記モノマーaと前記モノマーbと前記無機材料Bと重合開始剤とを含む水溶液を調製後、前記モノマーaとbを共重合させることにより共重合体Aと前記無機材料Bとの複合体Xの分散液Lを製造する第1工程、前記分散液Lを基材に塗布し、その後乾燥することにより前記複合体Xの薄層を形成する第2工程を順次行なうことを特徴とする細胞培養基材の製造方法が挙げられる。式1Ra<0.19のとき無機材料Bの濃度質量<12.4Ra0.05式2Ra≧0.19のとき無機材料Bの濃度質量<0.87Ra2.17式中、無機材料Bの濃度質量は、無機材料Bの質量を水媒体と無機材料Bの合計質量で除して100を掛けた数値、Raは無機材料Bと共重合体Aとの質量比B/Aである。無機材料Bの水媒体に対する濃度質量は式1又は式2で表される範囲内であると、良好な複合体Xの分散液Lが得られ、支持体への塗布が容易で、平滑で均一な薄い塗膜が得られ、好ましい。本発明の製造方法で製造される分散液Lは、そのまま使用してもよいし、水洗などによる精製工程を経てから使用してもよい。また該分散液Lに更にレベリング剤や界面活性剤、ペプチド、たんぱく質、コラーゲン、アミノ酸類、高分子化合物などを添加して使用してもよい。以下、実施例により本発明を具体的に説明するが、本発明の範囲がこれらの実施例にのみ限定されるものではない。実施例1共重合体Aと無機材料Bからなる培養基材例。[メトキシエチルアクリレートa、ジメチルアクリルアミドb、無機材料B、水媒体Eを含む反応溶液の調製]メトキシエチルアクリレートa1.952g、ジメチルアクリルアミドb0.99g、無機材料Bとして水膨潤性粘土鉱物LaponiteXLGRockwoodAdditivesLtd社製0.2g、水100g、を均一に混合して反応溶液1を調製した。[重合開始剤を溶媒に溶解させた溶液の調整]溶媒として、メタノール9.8g、重合開始剤として1-ヒドロキシシクロヘキシルフェニルケトンイルガキュアー184チバガイギー社製0.2gを、均一に混合して溶液2を調製した。[複合体Xの分散液Lの調製第1工程]上記反応溶液1全量に、溶液2を250μl入れ、均一に分散させた後、365nmにおける紫外線強度が40mW/cm2の紫外線を180秒照射し乳白色の複合体Xの分散液L1を作製した。この反応系のRa=0.06、無機材料Bの濃度質量=0.20<12.4Ra0.05=0.79[培養基材複合体Xの薄層の調製第2工程]直径35mmのポリスチレン製シャーレCORNINGセルカルチャデイッシュ430165に、上記複合体Xの分散液L1を入れ、スピンコーターを用いて3000回転で該分散液をシャーレの表面に薄く塗布した後、80°Cの熱風乾燥器中で10分間乾燥させ、次いで、滅菌水によりシャーレを洗浄した後、滅菌袋中でシャーレを40°C、5時間乾燥させて、細胞培養基材1を得た。[血液由来単核細胞の培養回収]上記得られた細胞培養基材1を照射線量10kGyの電子線で滅菌した日本照射サービス株式会社後、培地としてリンパ球増殖基本培地LGM3を適量入れ、ヒト末梢血液由来の単核細胞TakaraCC2072、タカラバイオ株式会社を2.0×106個/Dishで播種して、5二酸化炭素中、37°Cで4日間培養を行った。次いで、ディッシュ中の浮遊している単核細胞を直径35mmのポリスチレン製シャーレCORNINGセルカルチャデイッシュ430165に播種して、5二酸化炭素中、37°Cで1日間培養したところ、接着細胞が観察された。上記培養基材1で培養後、ポリスチレン製シャーレCORNINGセルカルチャデイッシュ430165に再播種後に接着した細胞の数10.53×104個が、未コート培養シャーレCORNINGセルカルチャデイッシュ430165で培養後、ポリスチレン製シャーレCORNINGセルカルチャデイッシュ430165に再播種後に接着した細胞の数2.28×104個比較例2参照の4.7倍であった。この実施例より、共重合体Aと無機材料Bからなる培養基材が、通常のティッシュカルチャデイッシュに比べ、細胞培養性が高いことが理解できる。なお、播種前後の細胞数は以下の方法でカウントした。まず、冷凍細胞は解凍後に培養液を添加することで細胞懸濁液とした。ディッシュ上の細胞は、0.05トリプシン/0.53mMEDTAにて細胞回収後、培養液を添加することで懸濁液とした。次に、細胞懸濁液を100μL採取し、1.5mLマイクロチューブに入れた。そこへケモメテック社製細胞溶解液リージェントAを等量添加した。チューブをVortexで混和後、ケモメテック社製細胞中和液リージェントBをさらに100μL添加した。細胞計測用カートリッジを用いて調製した細胞懸濁液を採取し、細胞計測装置ヌクレオカウンターTM、chemometec社で計測した。実施例1と同様の細胞培養基材1を作製し、細胞種のみ骨髄由来単核細胞ベリタス株式会社とした。上記培養基材1で培養後、ポリスチレン製シャーレCORNINGセルカルチャデイッシュ430165に再播種し1日培養後の接着細胞の数14.85×104個が、未コート培養シャーレCORNINGセルカルチャデイッシュ430165で培養後、ポリスチレン製シャーレCORNINGセルカルチャデイッシュ430165に再播種後に接着した細胞の数11.8×104個の1.3倍であった。この実施例より、共重合体Aと無機材料Bからなる培養基材が、通常のティッシュカルチャデイッシュに比べ、細胞培養性が高いことが理解できる。比較例1メトキシエチルアクリレートaのみの重合体と無機材料Bからなる培養基材例。[メトキシエチルアクリレートa、無機材料B、水媒体を含む反応溶液の調製]メトキシエチルアクリレートa3.2g、無機材料Bとして水膨潤性粘土鉱物LaponiteXLGRockwoodAdditivesLtd社製0.2g、水媒体として水100g、を均一に混合して反応溶液2を調製した。[複合体Xの分散液Lの調製第1工程]上記反応溶液2全量に、溶液2を250μl入れ、均一に分散させた後、365nmにおける紫外線強度が40mW/cm2の紫外線を180秒照射し乳白色の複合体Xの分散液L2を作製した。この反応系のRa=0.06、無機材料Bの濃度質量=0.20<12.4Ra0.05=0.79[培養基材複合体Xの薄層の調製第2工程]直径35mmのポリスチレン製シャーレCORNINGセルカルチャデイッシュ430165に、上記複合体Xの分散液L2を入れ、スピンコーターを用いて3000回転で該分散液をシャーレの表面に薄く塗布した後、80°Cの熱風乾燥器中で10分間乾燥させ、次いで、滅菌水によりシャーレを洗浄した後、滅菌袋中でシャーレを40°C、5時間乾燥させて、細胞培養基材2を得た。[血液由来単核細胞の培養回収]上記得られた細胞培養基材2を照射線量10kGyの電子線で滅菌した日本照射サービス株式会社後、実施例1と同様にして、ヒト末梢血液由来の単核細胞の培養を行い、ポリスチレン製シャーレCORNINGセルカルチャデイッシュ430165に再播種後の接着細胞のカウントを行ったところ、接着細胞の数は0.8×104個であった。上記培養基材2で培養された接着細胞の数0.8×104個が、未コート培養シャーレCORNINGセルカルチャデイッシュ430165を用いた場合2.28×104個の0.4倍であった。この比較例より、メトキシエチルアクリレートaのみの重合体と無機材料Bからなる細胞培養基材2では、ヒト末梢血液由来の単核細胞に対する培養増殖性が低く、ポリスチレン製シャーレCORNINGセルカルチャデイッシュ430165に再播種後に出現する接着細胞が少ないことが理解できる。比較例2直径35mmのポリスチレン製シャーレCORNINGセルカルチャデイッシュ430165をそのまま用いて、実施例1と同様にして、ヒト末梢血液由来の単核細胞の培養を行い、ポリスチレン製シャーレCORNINGセルカルチャデイッシュ430165に再播種後の接着細胞のカウントを行ったところ、接着細胞の数は2.28×104個であった。この比較例より、通常のポリスチレン製セルカルチャデイッシュでは、ヒト末梢血液由来の単核細胞に対する培養増殖性が低く、ポリスチレン製シャーレCORNINGセルカルチャデイッシュ430165に再播種後に出現する接着細胞が少ないことが理解できる。比較例3直径35mmの市販の低接着培養シャーレEZ-BindShutII、AGCテクノグラス株式会社製を用いて、実施例1と同様にして、ヒト末梢血液由来の単核細胞の培養を行い、ポリスチレン製シャーレCORNINGセルカルチャデイッシュ430165に再播種後の接着細胞のカウントを行ったところ、接着細胞の数は0.4×104個であった。この比較例より、市販の低接着培養シャーレでは、ヒト末梢血液由来の単核細胞に対する培養増殖性が低く、ポリスチレン製シャーレCORNINGセルカルチャデイッシュ430165に再播種後に出現する接着細胞が少ないことが理解できる。比較例4共重合体Aのみの無機材料Bを含まない基材の例[メトキシエチルアクリレートa、ジメチルアクリルアミドb、水媒体を含む反応溶液の調製]メトキシエチルアクリレートa1.952g、ジメチルアクリルアミドb0.99g、水媒体として水100g、を均一に混合して反応溶液3を調製した。[共重合体Aの分散液の調製第1工程]上記反応溶液3全量に、溶液2を250μl入れ、均一に分散させた後、365nmにおける紫外線強度が40mW/cm2の紫外線を180秒照射し乳白色の共重合体Aの分散液を作製した。この分散液を用いて、実施例1と同様にして細胞培養基材3を得た。上記細胞培養基材3を用いてヒト末梢血液由来の単核細胞の培養を行い、ポリスチレン製シャーレCORNINGセルカルチャデイッシュ430165に再播種後の接着細胞のカウントを行ったところ、接着する細胞は殆ど見当たらなかった。この比較例より、無機材料Bを含まない、共重合体Aのみの基材では、細胞との接着性が低過ぎて、細胞が増殖できないことが理解できる。"