ラクトバチルスブレビスCNCMI-4431株、CNCMI-4431株の突然変異誘発又は遺伝子形質転換によって得られるラクトバチルスブレビス株、から選択されるロイテリン蓄積ラクトバチルスブレビス株。ロイテリン産生への請求項1に記載のラクトバチルスブレビス株の使用。請求項1に記載のラクトバチルス株を含む組成物。乾燥重量1g当たり少なくとも105cfu、好ましくは少なくとも106cfuの前記ラクトバチルスブレビス株を含むことを特徴とする、請求項3に記載の組成物。栄養組成物であることを特徴とする、請求項3又は4に記載の組成物。乳製品であることを特徴とする、請求項5に記載の組成物。薬剤として使用される、請求項1に記載のラクトバチルスブレビス株又は請求項3~6のいずれか一項に記載の組成物。前記薬剤がH.ピロリ感染を治療又は予防することを特徴とする、請求項7に記載の薬剤として使用されるラクトバチルスブレビス株又は組成物。実施例1:L.ブレビスCNCMI-4431株によるH.ピロリ株の成長のinvitro阻害材料及び方法ラクトバチルスブレビス株:L.ブレビスCNCMI-4431L.ブレビス80:従来のL.ブレビス株ヘリコバクターピロリ株:3つのH.ピロリ参照株及び5つの臨床分離株を使用した。参照株:26695:TOMBSetalに記載;HPAG1:OHetalに記載;TN2GF4:日本で胃潰瘍患者から単離され、スナネズミに適合させた株WATANABEetalGastroenterol1998vol115pp642648に記載の株臨床分離株:CR113及びCR114:ヒト前がん胃病変生検材料から単離された株;Axcan342及びAxcan374:それぞれ、H.ピロリの除菌のための4剤併用療法を試験する臨床研究に参加した胃炎患者及び食道炎患者から単離された株MALFERTHEINERetalLancet3779059132011。GC3C:胃がん患者から単離された株。方法:L.ブレビス株正:strainsを、MRSBrothpH6.2中で17時間成長させた。細菌懸濁液をKOH溶液でpH6.8に中和した。H.ピロリ株を、マクファーランドMacFarland4標準に等しい濁度が得られるまでBrucellaBroth中で48時間成長させた。細菌懸濁液を、最終濃度100mMまでグリセロールを含む同じ培地中、1v/vのPolyvitex添加剤Biomerieuxで強化した10v/vヒツジ血液を添加したミューラーヒントン寒天プレートの表面に塗布し、ロイテリンを産生させた。滅菌ペーパーディスクをプレートの表面に貼り付けた。次いで、5μLの中和したL.ブレビス懸濁液を各ペーパーディスクに適用した。プレートを37°C、微好気的雰囲気5O2、10CO2及び85N2をもたらすRuskinの微好気ガスソーター下で72時間~96時間インキュベートした。H.ピロリ株の成長に対するL.ブレビス懸濁液の効果を評価するために、ペーパーディスク周辺の成長阻害リングの幅を測定した。結果結果を下記表1に示す。これらの結果から、L.ブレビス80が試験した2つのH.ピロリ株にしか阻害特性を有さない一方で、L.ブレビスI-4431は試験した8つのH.ピロリ株のうち8つの成長を阻害することが示される。これらの阻害特性は、グリセロールの存在下で成長させたL.ブレビス培養物でしか観察されないことから、ロイテリンの蓄積と関連するようである。実施例2:gldC遺伝子のPCRスクリーニング材料及び方法ロイテリン産生に関与する酵素であるグリセロールデヒドラターゼの大サブユニットGldCをコードする遺伝子のL.ブレビスCNCMI-4431における存在を、非特許文献2上掲に記載の方法に従って試験した。簡潔に述べると、全DNAを、試験した各々の細菌株から単離した。陽性対照Cとして、ロイテリン産生L.ロイテリ正:LreuteriATCC55730株を使用した。陰性対照C-として、非ロイテリン産生種ストレプトコッカスサーモフィルスの株を使用した。Gldの大サブユニットをコードする遺伝子gldCのフラグメントの増幅を、以下の縮重プライマーを用いて行った:GDCRev:GCRGCYTTSATATCTKSAACCAT配列番号1及びGDCFor:GCMTAYGCWGAAACCATTTCAGTTTA配列番号2どちらも非特許文献2に記載されている。増幅されたgldCフラグメントの期待サイズは728bpである。陽性PCR反応対照として、16SrRNA遺伝子のフラグメントも、以下の真正細菌プライマーを用いて全サンプルから増幅した:16SFor:ACTCCTACGGGAGGCAGCAG配列番号3及び16SRev:GTATTACCGCGGCTGCTGGCAC配列番号4どちらも非特許文献2に記載されている。増幅された16SrRNAフラグメントの期待サイズは201bpである。結果PCR反応の結果を図1に示す。L.ブレビスCNCMI-4431株、L.ブレビス80株及びCロイテリン産生L.ロイテリATCC55730株は期待される728bp産物について陽性であった。したがって、L.ブレビスCNCMI-4431株は、ロイテリン産生を可能にするgldC遺伝子を有する。実施例3:C.エレガンスモデルにおけるH.ピロリ感染に対するL.ブレビスCNCMI-4431の効果L.ブレビス及びH.ピロリの培養L.ブレビスCNCMI-4431株を実施例1に開示のようにMRSBroth中で成長させた。H.ピロリのNCTC11637ATCC43504T株を、5v/vウマ血液Oxoidを含有するBHI培地Oxoid中で成長させた。上清を遠心分離によって細胞から分離し、NaOH1Mで中和した。次いで、上清を濾過し0.22μm、細胞ペレットに添加した。H.ピロリ培養の場合、ウマ血液を含有するBHI培地Oxoidを遠心分離によって除去し、細胞を生理食塩溶液で洗浄した。C.エレガンス感染アッセイに使用するNG寒天プレートは、O.D.=2.22の各LAB培養物細胞及び上清を含むを対応するH.ピロリ株の細胞O.D.=0.022とともに含有する100μLの混合物を添加することによって調製した。線虫にLABを供給しない参照条件においては、H.ピロリ細胞を生理食塩溶液に再懸濁し、プレートに添加した。C.エレガンス感染アッセイ野生型C.エレガンス株N2を用いて感染アッセイを行った。H.ピロリのNCTC11637株を線虫感染に使用した。実験は、同調幼若成虫3日齢の線虫を以下の異なる培養条件に移すことによって開始した:NG培地E.コリOP50対照NG培地E.コリOP50100μLのLAB培養培地対照培養培地NG培地E.コリOP50100μLのH.ピロリNCTC11637TLAB。虫を2日毎に新たなプレートに移しながら8日間25°Cでインキュベートした。線虫集団の生存を各々の培養条件でスコアリングした。インキュベーション期間の後、1つの条件につき15匹の虫のサンプルを取り、0.1TritonX-100を含有するM9バッファーで洗浄した。虫を0.4gの炭化ケイ素ビーズ及びボルテックスを用いて破壊した。感染した虫のDNAを、市販のキットHighPurePCRTemplatePreparationKitRocheを用いて単離し、続いて無水エタノール及び5M酢酸カリウムによる沈殿及び洗浄プロセスを行った。DNAサンプルの希釈物を使用して、サンプル中のH.ピロリの存在をRT-PCRによって定量化した。RT-PCR本研究に使用するプライマーはvacA遺伝子を対象とするNAYAKROSE、JApplMicrobiol1031931412007。プライマーはHpylF5’CAATAGCAATCAAGTGGCTTTG3’、配列番号5及びHpylR5’GCGCGCTTCCACATTAGC3’、配列番号6と名付けられている。特異性は既にBLASTオンラインツールによってコンピューターで、更にはH.ピロリ種の株、種々のプロバイオティクス株及びC.エレガンスの採餌に使用するE.コリOP50を用いてQ-PCRによってinvitroで確認されている以前の最適化の報告を参照されたい。SYBR商標GreenPCRMasterMixAppliedBiosystem及びStepOneReal-TimeサーモサイクラーAppliedBiosystemを使用した。下記表2にH.ピロリのQ-PCR反応の最適化条件をまとめる。DNAの標準曲線を、分光光度法A260によるH.ピロリDNAの定量化によって作成した。対応するゲノムの数を以下のようにして算出した:ゲノム数=DNAg×NA/MmH.ピロリのゲノムサイズ=1.6MpbNA=6.023×1023ゲノム数=DNAg×6.023×1023/1.6×106×2×309標準曲線を4つのDNAの10倍希釈物を用いて作成した。MRS中又はMRSグリセロール中で成長させたI-4431株によって得られた結果を図2に示す。これらの結果から、CNCMI-4431株がC.エレガンスにおけるH.ピロリNCTC11637Tの負荷を低減することが示される。I-4431株をMRSグリセロール中で成長させた場合に感染の低減がより顕著であり、この株の抗感染効果の少なくとも一部がロイテリン産生に起因することが示される。