ナノサイズに調製されたスフィンゴ糖脂質を皮膚に適用することを特徴とする表皮中内因性セラミドを生成増加させる方法。ナノサイズに調製されたスフィンゴ糖脂質が、ナノリポソーム又はナノ分散水溶液である請求項1に記載の表皮中内因性セラミドを生成増加させる方法。スフィンゴ糖脂質が米糠、米胚芽及び/又はこれら由来のスフィンゴ糖脂質である請求項1又は2に記載の表皮中内因性セラミドを生成増加させる方法。スフィンゴ糖脂質がβ-グルコシルセラミドである請求項1、2又は3に記載の表皮中内因性セラミドを生成増加させる方法。スフィンゴ糖脂質を内包するナノリポソームがリン脂質として、ジミリストイル-ホスファチジルコリンdimyristoylphosphatidylcholine:DMPC及びジミリストイル-ホスファチジルグリセロールdimyristoylphosphatidylglycerol:DMPG、ジパルミトイル-ホスファチジルコリンdipalmitoylphosphatidylcholine:DPPC及びジパルミトイル-ホスファチジルグリセロールdipalmitoylphosphatidylglycerol:DPPG、又はジステアロイル-ホスファチジルコリンdistearoylphosphatidylcholine:DSPC及びジミリストイル-ホスファチジルグリセロールdistearoylphosphatidylglycerol:DSPGを用い、作成されたものである請求項2に記載の表皮中内因性セラミドを生成増加させる方法。すなわち本発明は、米ぬか、米胚芽等の植物素材から得られたセラミドの前駆体であるグルコシルセラミドであるスフィンゴ糖脂質について、ナノリポソーム内包させ、或いはナノ分散水溶液とし、かかるリポソーム或いはナノ分散水溶液を皮膚に適用することにより、皮膚中に内因性セラミドを生成増加させ、その結果、効率よく皮膚のバリア機能、或いは水分保持水分蒸散防御機能を発揮させ、皮膚の保湿を確保することを課題とする。かかる課題を解決するための本発明は、その基本的態様として、ナノサイズに調製されたスフィンゴ糖脂質を皮膚に適用することを特徴とする表皮中内因性セラミドを生成増加させる方法である。具体的には、ナノサイズに調製されたスフィンゴ糖脂質が、ナノリポソーム又はナノ分散水溶液である表皮中内因性セラミドを生成増加させる方法である。より具体的には、スフィンゴ糖脂質が米糠、米胚芽及び/又はこれら由来のスフィンゴ糖脂質であり、さらに具体的には、スフィンゴ糖脂質がβ-グルコシルセラミドである表皮中内因性セラミドを生成増加させる方法である。また本発明は、スフィンゴ糖脂質を内包するナノリポソームがリン脂質として、ジミリストイル-ホスファチジルコリンdimyristoylphosphatidylcholine:DMPC及びジミリストイル-ホスファチジルグリセロールdimyristoylphosphatidylglycerol:DMPG、ジパルミトイル-ホスファチジルコリンdipalmitoylphosphatidylcholine:DPPC及びジパルミトイル-ホスファチジルグリセロールdipalmitoylphosphatidylglycerol:DPPG、又はジステアロイル-ホスファチジルコリンdistearoylphosphatidylcholine:DSPC及びジミリストイル-ホスファチジルグリセロールdistearoylphosphatidylglycerol:DSPGを用い、作成されたものである上記の表皮中内因性セラミドを生成増加させる方法である。本発明により、スフィンゴ糖脂をナノリポソームに効率よく内包させ、或いはスフィンゴ糖脂のナノ分散水溶液を、皮膚に適用することにより皮膚中の内因性セラミドが生成増加されることが判明した。これまでスフィンゴ糖脂質をリポソーム化、或いはナノ分散水溶液として皮膚に適用させる化粧料が提案されていたが、これらは、いずれもスフィンゴ糖脂質の有するバリア機能、或いは水分保持機能を検討しているものでしかなく、皮膚中の内因性セラミドを増加させている点を見出したのは本発明者等が始めてであり、その点で極めて特異的なものである。本発明が提供する内因性セラミドを生成増加させる方法は、スフィンゴ糖脂質を内包するナノリポソーム、或いはスフィンゴ糖脂のナノ分散水溶液を皮膚に適用することによってセラミドの前駆体であるスフィンゴ糖脂質を皮膚に浸透させ、その結果皮膚中において内因性セラミドに変換され、皮膚中に内因性セラミドが生成増加されるものである。したがって、本発明方法により、効果的に皮膚のバリア機能が向上すると共に、皮膚からの水分蒸散が防止され、保湿性に富んだ皮膚状態が保持されることとなる。その点で、本発明提供する方法は、今後極め有効な化粧料を開発していく上で、一つの指針を与えるものである。本発明は上記したように、その基本的態様は、スフィンゴ糖脂質グルコシルセラミドのナノリポソーム、或いはスフィンゴ糖脂質のナノ分散水溶液を皮膚に適用することによる、内因性セラミドを生成増加させる方法である。本発明に使用されるスフィンゴ糖脂質としては、セラミドの前駆体であり、特にその由来が限定されるものではなく、あらゆるスフィンゴ糖脂質を使用することができる。そのなかでも、スフィンゴ糖脂質として、米糠、米胚芽及び/又はこれら由来のスフィンゴ糖脂質が好ましく、より好ましくは、スフィンゴ糖脂質がβ-グルコシルセラミドである。このような米糠、米胚芽及び/又はこれら由来のスフィンゴ糖脂質、より好ましくは、スフィンゴ糖脂質がβ-グルコシルセラミドβ-GlcCerとしては、例えば、特開2010-270104号公報に記載する、米糠、米胚芽及び/又はこれら由来の素材を有機溶媒抽出して得たスフィンゴ糖脂質含有粗製画分を、クロマトグラフィー及び/又は再結晶により分画したスフィンゴ糖脂質精製画分からなるスフィンゴ糖脂質を挙げることができる。また、これらのスフィンゴ糖脂質は、ヒト型セラミドの前駆体であるのがより好ましいものである。本発明にあっては、このスフィンゴ糖脂質、例えばグルコシルセラミドをナノリポソーム中に内包させるものであるが、かかるナノリポソーム、例えば、一般的な薄膜法により調製することができる。スフィンゴ糖脂質は、脂質としてそれ自体でナノリポソームを形成することが可能であるが、本発明者等の検討によれば、スフィンゴ糖脂質のみを用いてナノリポソームを調製することはできなかった。そこで脂質としてさらにリン脂質を用い、薄膜法による調製で、効率よくスフィンゴ脂質を内包するナノリポソームを調製することができたそのようなリン脂質としては、卵黄レシチンや大豆レシチンのような天然リン脂質、或いはその他の各種リン脂質を用いることができ、特に限定されるものではない。そのようなリン脂質としては、ホスファチジルコリン、ホスファチジルエタノール、ホスファチジルセリン、ホスファチジルイノシトール等のグリセロリン脂質、スフィンゴミエリン等のスフィンゴリン脂質を挙げることができる。また、適宜脂肪酸の炭素数を変化させたリン酸エステル等であってもよい。本発明者等の検討の結果、ジミリストイル-ホスファチジルコリンdimyristoylphosphatidylcholine:DMPC及びジミリストイル-ホスファチジルグリセロールdimyristoylphosphatidylglycerol:DMPG;ジパルミトイル-ホスファチジルコリンdipalmitoylphosphatidylcholine:DPPC及びジパルミトイル-ホスファチジルグリセロールdipalmitoylphosphatidylglycerol:DPPG;又はジステアロイル-ホスファチジルコリンdistearoylphosphatidylcholine:DSPC及びジミリストイル-ホスファチジルグリセロールdistearoylphosphatidylglycerol:DSPGを用いて効率よくナノリポソーム化することができた。例えば、本発明のナノリポソームの調製は、リン脂質としてDMPC用いることにより調製することができるが、得られるナノリポソームの安定化のためには荷電物質であるDMPGを一緒に添加してナノリポソームを調製するのが、ナノリポソームの安定化のために良いことが判明した。その調製にあたっての配合量は、例えば、スフィンゴリン脂質:DMPCとして4:4の比率で調製するのが良く、DMPGを一緒に添加する場合には、スフィンゴリン脂質:DMPC:DMPGとして、4:4:1の比率で調製するのがよい。なお、この比率は好ましい比率として例示するものであって、この比率のみに限定されるものではなく、目的の含有量に併せ種々変更できることはいうまでもない。かくして調製された、スフィンゴ糖脂質を内包するナノリポソームは、動的光散乱法によりその粒子径を測定したところ、平均粒子径が140nm程度のナノリポソームであった。また、荷電物質であるDMPGを添加することによりゼータ電位から表面荷電を測定した結果、極めて良好な表面荷電値を有し、物理化学的に安定なものであり、化粧料への応用にあたって、従来のリポソームよりもより好ましいことが判明した。かくして調製されたスフィンゴ糖脂質を内包するナノリポソームを、三次元培養表皮モデルを用いた皮膚への適用を検討した。すなわち、ナノリポソームを三次元培養表皮モデルとともに培養し、一定期間培養後、表皮モデルから脂質を抽出し、高性能薄層クロマトグラフィーで分離し、セラミドの定量を行ったところ、内因性セラミド量の生成増加が認められた。このことから、培養表皮中でセラミドの前駆体であるスフィンゴ糖脂質グルコシルセラミドからセラミドが生成され、皮膚中において内因性セラミドが生成増加されていることが判明した。以下に、実施例に代え、スフィンゴ糖脂質としてβ-グルコシルセラミドβ-GlcCerを用い、具体的なナノリポソームへの内包の実際等を説明することにより、本発明をさらに詳細に説明する。ただし、本発明は以下の説明に限定されるものではなく、特許請求の範囲を逸脱しない限り種々の変更が可能であり、その変更も本発明に包含されるものである点に留意すべきである。以下の検討においては、スフィンゴ糖脂質としてβ-グルコシルセラミドβ-GlcCerを用いた。このβ-グルコシルセラミドβ-GlcCerは、具体的には、特開2010-270104号公報に記載する、米糠、米胚芽及び/又はこれら由来の素材を有機溶媒抽出して得たスフィンゴ糖脂質含有粗製画分を、クロマトグラフィー及び/又は再結晶により分画したスフィンゴ糖脂質精製画分からなるβ-グルコシルセラミドβ-GlcCerである。1.ナノリポソームの薄膜法による調製一般的な薄膜法による調製により、β-グルコシルセラミドβ-GlcCerを内包するナノリポソームを調製した。すなわち、β-グルコシルセラミドβ-GlcCer、リン脂質を、適当な溶媒に溶解させて、ビーカー内に入れ溶媒を留去し、ビーカー内壁にβ-グルコシルセラミドβ-GlcCer及びリン脂質を付着させ、薄膜を形成し、水を加えて水和させ、機械的振動を加えることにナノリポソーム化し、そのまま凍結乾燥して、β-グルコシルセラミドリポソームβ-GlcCerLを得た。このβ-GlcCerLをエクストルーダーにより、β-GlcCerLの粒子径を調節した。この検討の結果、脂質でもあるβ-GlcCerのみではリポソームを調製することができなかった。そこで、更にリン脂質としてジミリストイル-ホスファチジルコリンDMPC及びジミリストイル-ホスファチジルグリセロールdimyristoylphosphatidylglycerol:DMPGを選択し、以下の配合により、目的とするナノリポソーム1及び2の調製を行った。<ナノリポソーム1>β-グルコシルセラミドβ-GlcCerにリン脂質としてジミリストイル-ホスファチジルコリンDMPCを添加して調製した。β-GlcCer/DMPC=4/4荷電物質なし<ナノリポソーム2>β-グルコシルセラミドβ-GlcCerにリン脂質としてジミリストイル-ホスファチジルコリンDMPCを添加し、更にジミリストイル-ホスファチジルグリセロールdimyristoylphosphatidylglycerol:DMPGを添加して調製した。β-GlcCer/DMPC/DMPG=4/4/1荷電物質あり得られたナノリポソーム1及び2の安定性を、タービスキャン英弘精機で検討したところ、ナノリポソーム2のほうがナノリポソーム1に比較して、極めて安定であることが判明した。すなわち、ナノリポソームの表面を荷電することにより安定したナノリポソームが得られることが判明した。2.得られたβ-グルコシルセラミドリポソームβ-GlcCerLの粒子径と表面電位上記で得られたβ-グルコシルセラミドリポソームβ-GlcCerL[ナノリポソーム1及びナノリポソーム2]について、その粒子径を動的光散乱法にて測定し、また、ゼータ電位から表面電位を測定した。その結果を図1粒子径及び図2表面電位に示した。なお、図中において、ClcCerDPPCはナノリポソーム1を、ClcCerDPPCDPPGは、ナノリポソーム2を意味する。図中の結果から判明するように、ClcCerDPPC[ナノリポソーム1]及びClcCerDPPCDPPG[ナノリポソーム2]共に、その粒子径は140nm程度であり、良好なナノリポソームであることが理解される。また、荷電物質を添加したClcCerDPPCDPPG[ナノリポソーム2]は、良好な表面荷電を有していることが理解される。3.培養皮膚への適用<方法>上記で得られたナノリポソーム1及び2を、ヒト3次元培養表皮モデルLabCyteEPIMODEL12を用い、7日間SPML適用で培養した。培養後、培養液をクロロホルム:メタノール2:1にて抽出し、濃縮後、高性能薄層クロマトグラフィーでHighPerformanceThinLayerChromatographyにて、セラミドのタイプ別に分離し、ルミノイメージアナライザーシステムLAS1000plus;富士フイルムにより、密度から内因性セラミドとして、セラミド2Cer2、セラミド5Cer5、セラミド6Cer6を定量した。なお、対照セラミドとして合成グルコシルセラミドAvanti社製を用い、ナノリポソームを調製し、同様にヒト3次元培養表皮モデルによる培養を行った。<結果>米ぬか由来グルコシルセラミドのナノリポソームの結果を図3に示し、同様に調製した対照の合成グルコシルセラミのナノリポソームの結果を図4に示した。米ぬか由来のグルコシルセラミド、並びに対照の合成グルコシルセラミド共に、皮膚中の内因性セラミド量を生成増加させていることが明らかとなった。内因性セラミドとして、セラミド2Cer2については大きな変動はなかったが、セラミド6Cer6は、ナノリポソーム2で大きく変動し、安定化したナノリポソームが特に好ましいことが理解される。皮膚中でのセラミドの生成経路を考慮すると、内因性セラミドであるセラミド2Cer2及びセラミド5Cer5は、皮膚顆粒層においてセラミドよりスフィンゴミエリンへ変換し、そのスフィンゴミエリンがスフィンゴミエリナーゼにより角質層でセラミド2Cer2及びセラミド5Cer5を生成する。一方、セラミド6Cer6は、皮膚顆粒層においてセラミドよりグルシルセラミドへ変換され、グルコセレブロシダーゼにより角質層でセラミド6Cer6を生成する。上記のヒト3次元培養表皮モデルの実験の結果は、かかるセラミドの生成経路に良く合致するものであって、グルコシルセラミドのナノリポソーム製剤の適用によりセラミド6Cer6の変動が大きなものとなっている。