"ウイルスベクターを用いて外来遺伝子を導入してなる遺伝子治療用脂肪細胞の調製に際し、外来遺伝子の導入に適した細胞集団かどうかを判定する方法であって、CD54の発現の程度を指標にしてその発現程度が低いほど適していると判定する方法。蛍光抗体を用いたフローサイトメトリー法によって測定されるCD54の発現陽性率が3未満および/またはCD54の平均蛍光強度比が2未満である細胞集団を適していると判定する請求項1記載の方法。ウイルスベクターを用いて外来遺伝子を導入してなる遺伝子治療用脂肪細胞を調製する方法であって、蛍光抗体を用いたフローサイトメトリー法によって測定されるCD54の発現陽性率が3未満および/またはCD54の平均蛍光強度比が2未満である細胞集団に対してウイルスベクターを用いて外来遺伝子を導入する方法。ウイルスベクターを用いて外来遺伝子を導入してなる遺伝子治療用脂肪細胞の調製のための、蛍光抗体を用いたフローサイトメトリー法によって測定されるCD54の発現陽性率が3未満および/またはCD54の平均蛍光強度比が2未満である細胞集団を取得する方法であって、脂肪細胞を天井培養法にて6~8日間培養する方法。ウイルスベクターを用いて外来遺伝子を導入してなる遺伝子治療用脂肪細胞の調製のための、蛍光抗体を用いたフローサイトメトリー法によって測定されるCD54の発現陽性率が3未満および/またはCD54の平均蛍光強度比が2未満である細胞集団。ウイルスベクターを用いて外来遺伝子を導入してなる遺伝子治療用脂肪細胞であって、蛍光抗体を用いたフローサイトメトリー法によって測定されるCD54の発現陽性率が3未満および/またはCD54の平均蛍光強度比が2未満である細胞集団に対してウイルスベクターを用いて外来遺伝子を導入してなる遺伝子治療用脂肪細胞。そこで本発明は、ウイルスベクターを用いて外来遺伝子を導入してなる遺伝子治療のための脂肪細胞の調製に際し、外来遺伝子の導入に適した細胞集団かどうかを判定する方法を提供することを目的とする。本発明者らは、上記の点に鑑みて鋭意研究を重ねた結果、脂肪組織から採取した脂肪細胞を天井培養する期間の相違によって、取得される脂肪細胞の外来遺伝子の導入陽性率と平均導入コピー数の特性が大きく異なることを見出した。そして、外来遺伝子の導入陽性率と平均導入コピー数の特性が異なる2種類の細胞集団のプロファイルを詳細に検討したところ、全く意外にも細胞表面抗原の1つであるCD54の発現の程度が外来遺伝子の導入陽性率と平均導入コピー数の特性の良し悪しを判定する上での優れた指標となることを知見した。上記の知見に基づいてなされた本発明は、請求項1記載の通り、ウイルスベクターを用いて外来遺伝子を導入してなる遺伝子治療用脂肪細胞の調製に際し、外来遺伝子の導入に適した細胞集団かどうかを判定する方法であって、CD54の発現の程度を指標にしてその発現程度が低いほど適していると判定するものである。また、請求項2記載の方法は、請求項1記載の方法において、蛍光抗体を用いたフローサイトメトリー法によって測定されるCD54の発現陽性率が3未満および/またはCD54の平均蛍光強度比が2未満である細胞集団を適していると判定するものである。また、本発明は、請求項3記載の通り、ウイルスベクターを用いて外来遺伝子を導入してなる遺伝子治療用脂肪細胞を調製する方法であって、蛍光抗体を用いたフローサイトメトリー法によって測定されるCD54の発現陽性率が3未満および/またはCD54の平均蛍光強度比が2未満である細胞集団に対してウイルスベクターを用いて外来遺伝子を導入するものである。また、本発明は、請求項4記載の通り、ウイルスベクターを用いて外来遺伝子を導入してなる遺伝子治療用脂肪細胞の調製のための、蛍光抗体を用いたフローサイトメトリー法によって測定されるCD54の発現陽性率が3未満および/またはCD54の平均蛍光強度比が2未満である細胞集団を取得する方法であって、脂肪細胞を天井培養法にて6~8日間培養するものである。また、本発明は、請求項5記載の通り、ウイルスベクターを用いて外来遺伝子を導入してなる遺伝子治療用脂肪細胞の調製のための、蛍光抗体を用いたフローサイトメトリー法によって測定されるCD54の発現陽性率が3未満および/またはCD54の平均蛍光強度比が2未満である細胞集団である。また、本発明は、請求項6記載の通り、ウイルスベクターを用いて外来遺伝子を導入してなる遺伝子治療用脂肪細胞であって、蛍光抗体を用いたフローサイトメトリー法によって測定されるCD54の発現陽性率が3未満および/またはCD54の平均蛍光強度比が2未満である細胞集団に対してウイルスベクターを用いて外来遺伝子を導入してなる遺伝子治療用脂肪細胞である。本発明によれば、ウイルスベクターを用いて外来遺伝子を導入してなる遺伝子治療のための脂肪細胞の調製に際し、外来遺伝子の導入に適した細胞集団かどうかを判定する方法を提供することができる。本発明は、ウイルスベクターを用いて外来遺伝子を導入してなる遺伝子治療用脂肪細胞の調製に際し、外来遺伝子の導入に適した細胞集団かどうかを判定する方法であって、CD54の発現の程度を指標にしてその発現程度が低いほど適していると判定するものである。本発明において、脂肪細胞のCD54の発現の程度は、例えば、蛍光抗体を用いたフローサイトメトリー法によって測定されるCD54の発現陽性率および/またはCD54の平均蛍光強度比に基づいて評価することができる。CD54の発現陽性率は、全測定細胞中のCD54の発現が検出される細胞の割合を意味し、CD54の平均蛍光強度比は、コントロール抗体であるCD54に非特異的な蛍光抗体による平均蛍光強度に対するCD54に特異的な蛍光抗体による平均蛍光強度の比率GeometricMean比を意味する。外来遺伝子の導入陽性率が高く、かつ平均導入コピー数が低い、外来遺伝子の導入に適した細胞集団であると判定するためには、CD54の発現陽性率は3未満であることが望ましく、CD54の平均蛍光強度比は2未満であることが望ましい。今般、本発明者らの研究により、例えば、ヒトの脂肪組織から採取した脂肪細胞を特許文献1に記載の方法に従って天井培養法にて14日間培養することで取得される細胞集団と、培養期間をその半分の7日間とした細胞集団のそれぞれに対し、レトロウイルスベクターを用いて外来遺伝子を導入した場合、外来遺伝子の導入陽性率と平均導入コピー数の特性が両者間で大きく異なることが明らかになった。加えて、2種類の細胞集団の間には、CD54の発現の程度の明確な相違が存在し、前者は発現の程度が高く、後者は発現の程度が低いことが判明した。外来遺伝子の導入陽性率と平均導入コピー数の特性の相違を、CD54の発現の程度の相違がなぜ反映するのかは必ずしも明らかではないが、外来遺伝子を導入する前に、CD54の発現の程度を指標として外来遺伝子の導入陽性率と平均導入コピー数の特性の良し悪しを判定することができることは、より治療効果に優れるとともに安全な脂肪細胞を用いた遺伝子治療技術の確立に大いに寄与する。例えば、脂肪組織から採取した脂肪細胞を天井培養法にて6~8日間培養することで取得される、本発明の方法によって外来遺伝子の導入に適していると判定された脂肪細胞の細胞集団に対する外来遺伝子の導入は、レトロウイルスベクターやアデノ随伴ウイルスベクターなどのウイルスベクターを用いた自体公知の方法によって行うことができる例えば特許文献1を参照のこと。なお、本発明において天井培養を行って外来遺伝子を導入する対象となる脂肪細胞は、ヒトをはじめとする哺乳動物の皮下、副睾丸、腸間膜などに存在する脂肪組織から採取される増殖型の脂肪細胞であれば、成熟脂肪細胞matureadipocytesであってもよいし前脂肪細胞preadipocytesであってもよい。外来遺伝子は、ウイルスベクターを用いて脂肪細胞に導入することができ、投与された生体内において所望の生理的機能を発揮するタンパク質やペプチドをコードする遺伝子であれば特段制限されるものではなく、例えば前出のLCAT欠損症の治療のためのLCATをコードする遺伝子の他、糖尿病の治療のためのインスリンやグルカゴン、糖尿病や肥満の治療のためのレプチンやアデイポネクチン、血友病の治療のための血液凝固第IX因子、リポプロテインリパーゼLPL欠損症の治療のためのLPL、低HDL血症の治療のためのアポA1、高血圧や心不全の治療のための心房性ナトリウムペプチドANP、血管新生阻害のためのアンジオスタチン、骨粗鬆症の治療のためのカルシトニン、悪性腫瘍の治療のためのインターフェロンやインターロイキン、創傷の治癒のための顆粒球コロニー刺激因子G-CSF、各種の免疫疾患の治療のための病態中和抗体などのタンパク質やペプチドをコードする遺伝子が挙げられる。これらの遺伝子は、例えば既知の塩基配列を持つヒト由来のものであってもよいし、ヒト由来の遺伝子の塩基配列に対して1以上の塩基が置換欠失付加挿入され、かつ、ヒト由来の遺伝子がコードするタンパク質やペプチドが有する生理的機能が保持や増強されたタンパク質やペプチドをコードするものであってもよい。外来遺伝子を導入した遺伝子治療用脂肪細胞の患者への投与移植は自体公知の方法によって行えばよい例えば特許文献1を参照のこと。以下、本発明を実施例によって詳細に説明するが、本発明は以下の記載に限定して解釈されるものではない。実験A.外来遺伝子の導入陽性率と平均導入コピー数の特性とヒト脂肪細胞の取得方法の関係の検討1外来遺伝子を導入するヒト脂肪細胞の取得非特許文献1に記載の方法に従って行った。具体的には、まず、ボランティアNo.C009より得た脂肪組織を、2mg/mLのコラゲナーゼを含むHank’sbalancedsaltsolutionSigma社で、37°Cにおいて1時間処理した50mLのコニカルチューブ内で脂肪組織1gに対してコラゲナーゼ溶液3mLを添加して行った。次に、20FBSを含むDMEM-HAMDMEM-HAM/20FBS、Sigma社を10mL加えて攪拌した後、400gで1分間遠心した。遠心後、コニカルチューブ内の間質血管系画分Stromal-vascularfraction:SVFを含む溶液を除去した。さらに、DMEM-HAM/20FBSを10mL加えて攪拌した後、400gで1分間遠心し、SVFを含む溶液を除去する操作を4回行い、脂肪細胞増殖型成熟脂肪細胞を含む上清画分を得た。500μmメッシュCorning社を用いて脂肪細胞を含む上清画分をろ過した後、10mLのDMEM-HAM/20FBSでメッシュ上に残った組織を洗浄した。得られたろ液を、培地としてDMEM-HAM/20FBSを充填し、予め37°Cに保温しておいたT150またはT225フラスコCorning社に加え、さらに気泡がフラスコ内にできるだけ残らないようにDMEM-HAM/20FBSを追加した。その後、フラスコの側面が培養面天井面となるようにフラスコを横にし、CO2インキュベーター37°C、5CO2内で天井培養した。7日間または14日間の培養の後、フラスコ内の培地を除去し、培養面に増殖した脂肪細胞をPBSで2回洗浄した後、TrypZeanSigma社を用いて処理することで回収した。回収した脂肪細胞は、DMEM-HAM/20FBSを培地として用いて通常の方法で培養した継代培養を週2回実施。2ヒト脂肪細胞への外来遺伝子の導入ウイルスベクターとしてヒトLCAT遺伝子搭載レトロウイルスベクターとZsGreen遺伝子搭載レトロウイルスベクターを使用した。これらのウイルスベクターは、自体公知の方法により、タカラバイオ社のpDON-AIベクターにヒトLCAT遺伝子のcDNAまたはZsGreen遺伝子のcDNAを挿入して構築したプラスミドを、パッケージング細胞株であるGPE86にトランスフェクトした後、その培養上清をGPenvAM12に感染させることで作製した必要であればBestwickら,Proc.Natl.Acad.Sci.USA85:54041988やKozakら,J.Virol.64:35001990などを参照のこと。ウイルスベクター含有遺伝子導入溶液には最終濃度が20となるようにFBSを加えた。遺伝子導入は、脂肪細胞の培養液から培地であるDMEM-HAM/20FBSをピペットで除去し、ウイルスベクター含有遺伝子導入溶液に置換した後、一晩CO2インキュベーター37°C、5CO2内で培養することにより行った2.5×105個の細胞を播種して接着させたT25フラスコCorning社に2mLのウイルスベクター含有遺伝子導入溶液を添加。なお、遺伝子導入補助試薬として硫酸プロタミン持田製薬社を最終濃度8μg/mLで使用した。遺伝子導入後の脂肪細胞は、DMEM-HAM/20FBSを培地として用いて通常の方法で培養した継代培養を週2回実施。3遺伝子の導入陽性率の測定遺伝子導入後、1週間以上継代培養した脂肪細胞について測定した。ヒトLCAT遺伝子の導入陽性率は、免疫染色法によって測定した。具体的には、コラーゲンコートされた8wellカルチャースライドに5,000個/wellとなるように細胞を播種して接着させた後、PBSで細胞を洗浄してから4パラホルムアルデヒドPFAリン酸緩衝液を固定液として添加して細胞を固定し、一次抗体としてEpitomics社の抗ヒトLCATウサギモノクローナル抗体、二次抗体としてInvitrogen社のAlexaFluor568抗ウサギIgGHLヤギ抗体を用いた免疫染色を行った。染色操作終了後、VECTASHIELDmountingmediumforFluorescencewithDAPIVectorLaboratories社で細胞の核を染色し、AlexaFluorによる赤色蛍光とDAPIによる青色蛍光を蛍光顕微鏡で観察することで、DAPIによって染色された細胞数に対するAlexaFluorによって染色された細胞数の比率を算出し、導入陽性率とした。ZsGreen遺伝子の導入陽性率は、ZsGreenタンパク質が緑色の蛍光タンパク質であることから、フローサイトメトリー法によって測定したベクトンディッキンソン社のFACSCaliburを使用し、5,000個の細胞について2回測定した。4遺伝子の平均導入コピー数の算出遺伝子導入後、1週間以上継代培養した脂肪細胞について測定した。経代操作時に1×105~2×105個の細胞を1.5mLのプラスチックチューブに回収し、4°Cにおいて3,000rpmで5分間遠心した後、上清を除去し、細胞を200μLのPBSに懸濁した。得られた細胞懸濁液は、そのままDNA抽出操作に供するか、もしくはDNA抽出操作を行うまで-20°Cに凍結保存した。GenomicDNAの抽出は、DNeasyBloodTissuekitQIAGEN社を用いて行った。遺伝子の導入コピー数は、レトロウイルスベクターのパッケージングシグナル領域に特異的なプライマータカラバイオ社を用い、SYBRPremixExTaqTMタカラバイオ社を用いたSYBRGreen法により定量したアプライドバイオシステムズ社のABI7500を使用。検量線用のDNAは、2でタカラバイオ社のpDON-AIベクターにヒトLCAT遺伝子のcDNAを挿入して構築したプラスミドを使用した。こうして測定された定量値から、ヒトにおいては1個の細胞あたり6pgの染色体DNAを有するという報告VladimirARogachevら,CancerCellInternational,2006,6:23を元に、遺伝子の平均導入コピー数を算出した。5結果天井培養を7日間行って取得した脂肪細胞以下、CF7と略称すると14日間行って取得した脂肪細胞以下、CF14と略称するのそれぞれに、天井培養終了後1日目に外来遺伝子としてヒトLCAT遺伝子を導入した際の導入陽性率と平均導入コピー数を図1に示す。図1から明らかなように、特許文献1に記載の方法によって取得したCF14よりもCF7の方が、同一条件下では外来遺伝子の導入陽性率が高く、かつ平均導入コピー数が低く、脂肪組織から採取した脂肪細胞を天井培養する期間の相違によって、取得される脂肪細胞の外来遺伝子の導入陽性率と平均導入コピー数の特性が異なることがわかった図1において、導入日は天井培養終了後に通常の方法で培養を開始してから遺伝子導入を行うまでの日数を示す。TotaldoseはウイルスベクターのMOIRNAゲノムコピー数/標的細胞数の合計値を表し、導入日が複数の場合はこの合計値を均等に分割して感染させた。この相違は、外来遺伝子としてZsGreen遺伝子を導入した場合でも同様であり、CF7を用いた場合、天井培養を終了してから時間をおかずにすぐに遺伝子導入を行った時の方が、時間をおいてから遺伝子導入を行った時よりも、外来遺伝子の導入陽性率が同等でありながら、平均導入コピー数がより低くなることがわかった図2:CF78とCF715はそれぞれ天井培養開始後8日目と15日目、即ち、天井培養終了後1日目と8日目に遺伝子導入を行った時の結果を示す。従って、遺伝子導入は天井培養終了後3日目以内に行うのが望ましく、2日目以内に行うのがより望ましく、1日目以内に行うのがさらに望ましい。実験B.ヒト脂肪細胞の取得方法とCD54の発現の程度の関係の検討検討方法実験Aの1において天井培養終了後に回収した脂肪細胞を300gで5分間遠心した後、FACSbuffer2FBS/PBSで2回洗浄した。次いで、ヨウ化プロピジウムで細胞の核を染色した後、細胞計数装置Chemometec社のNucleoCounterで細胞数を測定し、4.5×104個の細胞を用いて実験を行った。CD54の染色のための蛍光抗体にはCD54-FITCBeckmanCoulter社のCatIM0726を用い、アイソタイプコントロールコントロール抗体にはIgG1-FITC同、CatA07795を用いた。脂肪細胞に抗体を添加し、遮光して室温で30分間静置した後、FACSbufferを用いて300gで5分間の遠心洗浄を3回行った。次いで、200μLの1PFA/2FBS/PBSを加えて抗体を細胞に固定した後、FACSCaliburベクトンディッキンソン社を用いてCD54の発現の程度を解析した。検討結果2名のボランティアNo.C009とNo.C010より得た脂肪組織から取得したCF7とCF14のCD54の発現陽性率を図3に、平均蛍光強度比GeoMean比を図4に示す。図3から明らかなように、いずれのボランティアから取得したCF7も、CF14よりもCD54の発現陽性率が非常に低く、3未満であったC009では2.78、C010では1.96。また、図4から明らかなように、いずれのボランティアから取得したCF7も、CF14よりもCD54の平均蛍光強度比が非常に低く、2未満であったC009では1.23、C010では1.41。表1に、2名のボランティアから取得したCF7とCF14の、CD54を含めた種々の細胞表面抗原の発現陽性率と平均蛍光強度比を示す。表1から明らかなように、CF7とCF14の間において認められる外来遺伝子の導入陽性率と平均導入コピー数の特性の相違を反映する、CF7とCF14の間において認められる発現陽性率と平均蛍光強度比の特性の相違を有する細胞表面抗原としては、発現陽性率と平均蛍光強度比がともにCF14の数値よりもCF7の数値が小さいCD29、CD36、CD54、CD55があるが、発現陽性率と平均蛍光強度比の数値がともにCF7とCF14の間で大きな違いがあるのはCD54のみであった例えばCF7の数値がCF14の数値の1/2未満。従って、CD54の発現の程度は、外来遺伝子の導入対象となる脂肪細胞の細胞集団の外来遺伝子の導入陽性率と平均導入コピー数の特性の良し悪しを判定する上での優れた指標となり、発現程度が低いほど適していると判定できることがわかった。なお、脂肪細胞の天井培養期間を6日間にした場合と8日間にした場合も、程度に違いはあるものの、7日間にした場合の上記の結果と同様の結果となった。実験C.ヒトLCAT遺伝子の平均導入コピー数とLCAT蛋白分泌との相関の検討1LCAT蛋白解析用脂肪細胞の培養上清の調製実験Aと同様にして、ボランティアNo.C013より得た脂肪組織から取得したCF7に、種々の外来遺伝子導入条件MOIおよび導入日数で外来遺伝子としてヒトLCAT遺伝子を導入したそれぞれの細胞を、増殖用培地MesenPRO、Invitrogen社に懸濁させて1×105個/mLに調整した。この細胞懸濁液を12wellプレートに1wellあたり1mLずつ播種し、CO2インキュベーター内で一晩培養した。翌日、培養液を新鮮な培地0.6mLに交換し、CO2インキュベーター内で3日間培養した。培養後の培養液をプラスチックチューブに回収し、4°Cにおいて300gで5分間遠心することで得られた上清を以下のLCAT蛋白解析に使用した使用時まで-30°Cのフリーザーにて保存。2LCAT蛋白の免疫沈降ウェスタンブロット法による検出1で調製した20μLの培養上清を、0.2NP-40含有PBSPBS-NP40を用いて500μLに希釈した後、免疫沈降用抗体として2.5μLの抗ヒトLCATウサギモノクローナル抗体Epitomics社を添加し、4°Cで一晩転倒混和した。次に、二次抗体として20μLのTrueBlotanti-RabbitIgGIPBeadseBioscience社を反応液に添加し、4°Cで2時間転倒混和した後、4°Cにおいて5,000rpmで1分間遠心した。上清を除去した後、マトリックスをPBS-NP40で5回洗浄してから、2×SDSsamplebufferBIO-RAD社を10μL添加し、100°Cで5分間加熱した。氷上で冷却した後、卓上遠心機を用いて5,000rpmで30秒間遠心した。得られた上清をSDS-ポリアクリルアミドゲル電気泳動10で展開し、ニトロセルロースメンブレンに転写後にSuperBlockPIERCE社を用いて室温で1時間ブロッキングした。その後、ウェスタンブロット用一次抗体としてNOVUS社の抗ヒトLCATウサギポリクローナル抗体SuperBlockで1,000倍希釈、二次抗体としてTrueBlotanti-RabbitIgGHRPeBioscience社SuperBlockで5,000倍希釈を用いて抗原抗体反応を行った。化学発光基質はSuperSignalPIERCE社を用い、LAS-1000イメージアナライザーでLCAT蛋白を検出した。得られた画像を元に、市販の組換え型LCAT蛋白RoarBiomedical社を標準物質としてデンシトメトリー解析を行い、ヒトLCAT遺伝子の平均導入コピー数とLCAT蛋白量との相関を調べた。3LCAT蛋白活性の測定[3H]コレステロールAmericanRadiolabeledChemicals社をガラスチューブに0.2mL取り、窒素ガスにより溶媒を蒸発させた。アナソルブ登録商標LCATキット積水メディカル社の説明書に従って調製したLCAT基質液5mLを上記のガラスチューブに添加し、Vortexミキサーにより1分間混和した後、超音波発生機DigitalSonifierModel250:BRANSON社により、マイクロチップを用い、氷上において、超音波出力設定40、パルス発振ON,OFF各0.5秒間の条件で超音波処理を1分間行った。この超音波処理をあと5回繰り返した後合計6回、室温において3,000rpmで5分間遠心し、ラベル基質液とした4°Cで保存して1週間以内に使用。ガラスチューブに反応液1で調製した培養上清100μL、ラベル基質液100μL、1Mβ-メルカプトエタノール1μL、培地14μL、アポA1溶液AthensResearchTechnology社5μL:8μg蛋白相当を準備し反応液の総量は220μL、37°Cの恒温漕で、60分間インキュベーションした。その後、1.6mLのクロロホルム/メタノール2:1を添加し、反応を停止した。こうして得られたLCAT反応液をVortexミキサーにより60秒間激しく混和した後、0.1mLの蒸留水を添加し、さらに30秒間激しく混和した。その後、室温において3,000rpmで10分間遠心した。あらかじめ10mg/mLオレイン酸コレステロールコレステリルエステル2μLと10mg/mLコレステロール5μLをスポットしておいたTLCプレートWhatman社に、上記の遠心後の下層有機層50μLを、5μLずつ10回に分けてスポットした。スポット後のTLCプレートをヘキサン/エチルエーテル/酢酸146:50:4で展開後、風乾してからヨウ素ナカライテスク社で染色した。出現したコレステリルエステルのスポットを切り取り、10mLのClear-solIIナカライテスク社中に沈めた。その後、液体シンチレーションカウンターで放射能を測定した。液体シンチレーションカウンターによる測定値からLCAT活性コレステリルエステル合成能を算出し、ヒトLCAT遺伝子の平均導入コピー数とLCAT活性との相関を調べた。4結果2の方法で調べたヒトLCAT遺伝子の平均導入コピー数とLCAT蛋白量との相関と、3の方法で調べたヒトLCAT遺伝子の平均導入コピー数とLCAT活性との相関を図5に示す。図5から明らかなように、ヒトLCAT遺伝子の平均導入コピー数が増えるにつれて、LCAT蛋白量とLCAT蛋白活性も増えたことから、ヒトLCAT遺伝子の平均導入コピー数とLCAT蛋白分泌は相関することがわかったピアソンの相関係数rは、ヒトLCAT遺伝子の平均導入コピー数とLCAT蛋白量の相関について0.917で、ヒトLCAT遺伝子の平均導入コピー数とLCAT蛋白活性の相関について0.945:いずれもp<0.05。"