"表面に複数の水酸基を導入可能な第1の層と、前記第1の層上に配置され、前記第1の層に達する複数のウェル及び前記複数のウェルを連結する複数の流路のそれぞれが設けられ、前記第1の層と異なる材料からなる第2の層とを備えることを特徴とするバイオチップ用基板。前記第1の層は前記第2の層よりも高い親水性を有することを特徴とする請求項1に記載のバイオチップ用基板。前記第1の層は少なくとも酸化珪素からなることを特徴とする請求項1又は2に記載のバイオチップ用基板。前記第2の層は少なくとも珪素からなることを特徴とする請求項1乃至3のいずれか1項に記載のバイオチップ用基板。前記第2の層は少なくとも樹脂からなることを特徴とする請求項1乃至3のいずれか1項に記載のバイオチップ用基板。前記複数の水酸基と結合する複数の生体物質を更に備えることを特徴とする請求項1乃至5のいずれか1項に記載のバイオチップ用基板。前記複数の水酸基と前記複数の生体物質のそれぞれは、シランカップリング剤を介して結合していることを特徴とする請求項6に記載のバイオチップ用基板。前記複数の生体物質は少なくともデオキシリボ核酸からなることを特徴とする請求項6又は7に記載のバイオチップ用基板。前記複数の生体物質は少なくともリボ核酸からなることを特徴とする請求項6又は7に記載のバイオチップ用基板。前記複数の生体物質は少なくともペプチドからなることを特徴とする請求項6又は7に記載のバイオチップ用基板。前記複数の生体物質は少なくともタンパク質からなることを特徴とする請求項6又は7に記載のバイオチップ用基板。本発明は、バックグランドノイズを低減可能なバイオチップ用基板を提供する。上記目的を達成するために本発明の第1の特徴は、イシリコン酸化物層と、ロシリコン酸化物層の上に配置され、シリコン酸化物層に達する複数のウェルが設けられた非反応層と、ハウェルを介して表出するシリコン酸化物層の表面に配置された生体物質とを備えるバイオチップ用基板であることを要旨とする。本発明の第2の特徴は、イガラス板と、ロガラス板の上に配置され、シリコン酸化物層に達する複数のウェルが設けられた非反応層と、ハウェルを介して表出するガラス板の表面に配置された生体物質とを備えるバイオチップ用基板であることを要旨とする。本発明の第3の特徴は、イ非反応層と、ロ非反応層に設けられたウェルの底面に配置されたシリコン酸化物層と、ハシリコン酸化物層の表面上に配置された生体物質とを備えるバイオチップ用基板であることを要旨とする。本発明の第4の特徴は、イ表面に複数の水酸基を導入可能な第1の層と、ロ第1の層上に配置され、第1の層に達する複数のウェル及び複数のウェルを連結する複数の流路のそれぞれが設けられ、第1の層と異なる材料からなる第2の層とを備えることをバイオチップ用基板であることを要旨とする。本発明の第5の特徴は、イ第1の層上に配置された第2の層の一部を選択的にエッチングし、第1の層を表出させるステップと、ロ第1の層をナトリウム溶液に浸し、第1の層表面に複数の水酸基を導入するステップとを含むバイオチップ用基板の製造方法であることを要旨とする。本発明によれば、バックグランドノイズを低減可能なバイオチップ用基板を提供することができる。以下に本発明の実施の形態を説明する。以下の図面の記載において、同一又は類似の部分には同一又は類似の符号で表している。但し、図面は模式的なものである。したがって、具体的な寸法等は以下の説明を照らし合わせて判断するべきものである。また、図面相互間においても互いの寸法の関係や比率が異なる部分が含まれていることは勿論である。第1の実施の形態第1の実施の形態に係るバイオチップ用基板は、DNAホスホアミダイトを用いてプローブDNAを組立てる反応を行うことができる反応領域と、その反応を行わない非反応領域が表面に設けられている。ここで、図67に示した従来の基板Aでは、非反応領域が不活性化処理Cappingによって形成されていた。これに対し、第1の実施の形態に係るバイオチップ用基板では、反応領域は反応性を持つ材料で形成され、その他の領域は反応に不活性な材料で確実に形成されている。そのため、Capping等の表面の不活性化処理をしなくても反応領域と非反応領域が明確に区別されているという特徴を有している。まず、第1の実施の形態に係るバイオチップ用基板B0の一例を図1に示す。バイオチップ用基板B0は、2つのSi等からなる半導体層131の間にSi酸化物層132が介在しているサンドウィッチ構造をした板状体を有する。ここで、一方の半導体層131に、所定の配列パターンで、Si酸化物層132の表面132aにまで至るウェル13Aが設けられている。したがってバイオチップ用基板B0の場合、ウェル13Aの底面のみにSi酸化物層132の表面132aが表出していて、他の部分の表面は総てSiになっている。よって、ウェル13Aを介して表出するSi酸化物層132の表面のみが例えば1本鎖DNAを合成するための反応領域として機能し、他の表面は総て非反応領域として機能する。図2は、上記したバイオチップ用基板B0を用いて製造された別の基板の1例B1を示す。この基板B1は、バイオチップ用基板B0におけるウェル13Aの底面にのみシランカップリング層14が形成されている。そしてシランカップリング層14の上にDNAホスホアミダイトTを5段に連続して合成させたオリゴヌクレオチドスペーサ5Tからなるスペーサ層135が配置されている。この基板B1の場合、ウェル13Aの底面135aのみに、プローブDNA合成を可能とするオリゴヌクレオチドスペーサ5Tのスペーサ層135が配置されており、ウェル13Aの側面135bと半導体層131の表面131aはいずれもSiのままになっている。したがって、この基板B1では、ウェル13Aの底面のみがプローブDNA合成用の反応領域として機能し、ウェル13Aの側面や基板表面など他の部分は、Capping処理等による表面の不活性化が施されていなくてもそれ自体がプローブDNAの化学合成にとっては非反応領域になっている。なお、この基板B1において、シランカップリング層14は、オリゴヌクレオチドスペーサ5Tからなるスペーサ層135の合成を効率的に行うために配置されているが、必ずしも必要ではない。オリゴヌクレオチドスペーサ5Tからなるスペーサ層135を直接Si酸化物層132の表面132aに合成してもよい。この基板B1は次のようにして製造することができる。まず、図3で示すように、2つの半導体層131の間にSi酸化物層132がサンドウィッチされている構造の板状体を用意する。このとき、一方の半導体層131の厚みは、形成すべきウェルの深さと略同じとする。このような板状体としては、例えば、信越半導体株から市販されているSOIウェハが好適である。次に図4で示すように、一方の半導体層131の表面131aをレジスト16で全面被覆し、その上に、形成すべきウェルと同径の開口を有するマスクを配置したのち紫外線を照射し、さらに、マスクを除去して全体を現像する。その結果、図5で示すように、形成すべきウェルと同径の開口がレジスト16に形成され、そこから半導体層131の表面131aが表出する。次にレジスト16をマスクにして、半導体層131に対してSiのエッチャントを用いたエッチング処理を行い、Si酸化物層132の表面132aにまで至るウェル13Aを形成する。エッチング作用は、半導体層のエッチングが進んでSi酸化物層132の表面132aに到達した時点で自動的に停止する。その結果図6で示すように、ウェル13Aの底面でのみSi酸化物層132の表面132aが表出し、他の表面部分は総てSiから成る部材が得られる。そして、この部材におけるウェル13Aは、形成すべきウェルと直径及び深さが略同じになっている。次にシラン化処理を行う。シラン化反応はSi酸化物層表面のみで進行するため、図7に示すようにウェル13Aで表出するSi酸化物層132の表面132aにのみシランカップリング層14が形成される。そして最後に、ホスホアミダイト法を適用することによりシランカップリング層14にDNAホスホアミダイトTを反応させ、5merのTから成る1本鎖DNAを有するオリゴヌクレオチドスペーサ5Tからなるスペーサ層135を形成し、図2で示す基板B1が完成する。この過程で、DNAホスホアミダイトTは、シランカップリング層14のOH基とのみ共有結合するので、ウェル13Aによって表出するSi酸化物層132の表面132a上のみで合成反応が進む。ここでDNAホスホアミダイトTは、Siが表出している他の部分とは反応しないので、従来の基板Aの場合のように不活性化処理が施す必要がない。第1の実施の形態に係るバイオチップ用基板B0と、前記した従来の基板Aの製造工程を対比すると次のことが明らかである。まず従来の基板Aの場合、前記した工程a2でSiウェハの表面を熱酸化してSi酸化物層を形成することが必要であるが、第1の実施の形態に係るバイオチップ用基板B0の場合はこの工程a2が不要となる。また従来の基板Aの場合、前記した工程a5においてウェル内への樹脂液滴の充填、不活性化処理、及び樹脂液滴の溶解及び除去という一連の操作が不可欠であった。これに対し第1の実施の形態に係るバイオチップ用基板B0の場合は、これらの操作は全く不要になる。したがって第1の実施の形態に係るバイオチップ用基板B0の場合、樹脂液滴の充填量の過不足によって発生していた問題は解消され、反応領域と非反応領域の境界は明瞭となり、しかも反応領域はリソグラフィー技術とエッチング技術を適用して形成したウェル13Aの底面のみになり、他の部分は総て非反応領域になる。そのため、これを用いて作成したDNAチップの使用時における蛍光標識の精度は高くなり、またバックグラウンドノイズも発生しなくなる。さらに従来の基板Aの場合、設計基準に則った深さのウェルを形成するためには、工程a1のエッチング処理時にエッチング時間の管理を正確に行うことが必要であった。これに対し第1の実施の形態に係るバイオチップ用基板B0の場合は、半導体層131を掘り進むエッチング作用はSi酸化物層の表面に到達した時点で自動的に停止する。そして、形成されたウェル13Aの深さは、用いた半導体層131の厚みで一義的に決まるので、形成されたウェル13Aの深さは極めて正確になる。基板の他の例B2を図8に示す。この基板B2では、例えば熱酸化して一方の表層部分のみがSi酸化物層141aになっているSi等からなる半導体基板141のSi酸化物層141aの上に、例えばDNAホスホアミダイトTのような生体物質と反応せず、またDNA合成時に用いる各種の有機溶剤、酸液、アルカリ液などにも浸蝕されない材料から成る所定厚みの非反応層142が配置されている。そしてこの非反応層142の厚み方向には、所定の直径を有するウェル23がSi酸化物層141aの表面141bにまで所定の配列パターンで設けられている。そして、Si酸化物層141aの表面141bには、シランカップリング層14,DNAホスホアミダイトTを反応させて5merから成る1本鎖DNAを有するオリゴヌクレオチドスペーサ5Tからなるスペーサ層135がこの順序で配置されている。この基板B2の場合、ウェル23の底面のみからDNAホスホアミダイトTとの反応が可能であるオリゴヌクレオチドスペーサ5Tからなるスペーサ層135の表面が表出して反応領域を構成し、他の表面は不活性化処理が施されていないが、総てDNAホスホアミダイトTと反応しない材料から成る非反応領域になっている。ここで、上記した非反応領域を形成する非反応層142の材料としては、例えば、単結晶シリコン、酸化物を形成しにくい白金などの金属、窒化シリコンなどの窒化物、ポリエチレン、ポリスチレンのような反応性の官能基をもたないプラスチックなどをあげることができる。また非反応層142は、上記した材料部材のSi酸化物層への直接接合、上記材料のSi酸化物層表面への真空蒸着やCVD、モノマーを原料とした気相重合のような成膜法などによって形成することができる。そして、ウェル23の形成に関しては、例えばフォトリソグラフィー技術とエッチング技術などを適用して形成することができる。基板の他の例B3を図9に示す。この基板B3は、ガラス板151の表面に、基板B2の場合と同じ非反応層142が配置され、この層の厚み方向に、ガラス板151の表面151aにまで至るウェル152が設けられされ、ウェル152の底面から表出するガラス板の表面151aにのみシランカップリング層14、オリゴヌクレオチドスペーサ5Tからなるスペーサ層135が配置された構造になっている。この基板B3の場合、ウェル152の底面151aのみにオリゴヌクレオチドスペーサ5T層の表面が表出し、そこが反応領域を構成し、ウェルの側面や非反応層142の表面は、不活性化処理が施されることなく総て非反応領域になっている。基板の他の例B4を図10に示す。この基板B4は、DNAホスホアミダイトTと反応せず、またDNA合成時に用いる有機溶剤、酸液、アルカリ液などに浸蝕されない単一の材料から成る板状体161の表面161aから内部に向かって、所定の直径と深さを有するウェル162が設けられている。ウェル162の底面161aにはSi酸化物層163が配置され、さらにSi酸化物層の上にシランカップリング層14及びオリゴヌクレオチドスペーサ5Tからなるスペーサ層135が順次配置されている。この基板B4の場合も、DNAホスホアミダイトTと反応可能な部分はウェルの底面に位置するオリゴヌクレオチドスペーサからなるスペーサ層135のみであり、他の部分は非反応領域になっている。この非反応領域を構成する単一の材料としては、例えば、Siや、窒化シリコンなどの窒化物をあげることができる。そして、Siからなる板状体を用いた場合、上記したウェルは、例えば、反応性イオンエッチング、イオンミリングなどのドライエッチング、またはウェットエッチングなどを適用して形成することができる。なお、Si板の表面から内部に向かって酸素イオンをイオン注入するSIMOXSeparationbyIMplantedOxygen法を適用することにより、Si板の内部にその表面からある深さの位置にSi酸化物層を形成し、次にSi板の表面からそのSi酸化物層までウェルを形成してもよい。また、Si板の表面を一旦酸化したのち、その表面のSi酸化物層にフォトリソグラフィー技術とエッチング技術を適用して所定のパターンで配列する開口部を形成し、その後、開口部に表出しているSiの表面から上記したSIMOX法で酸素イオンをイオン注入し、次に、表面のSi酸化物層をエッチング除去することにより、前記した開口部の直下に、Si板の内部にその表面からある深さの位置にSi酸化物層の分離構造を形成することができる。そして、開口部の位置で、Si板の表面からSi酸化物層までウェルを形成してもよい。次に、本発明のバイオチップ用基板を用いてバイオチップを作成する工程を、図2で示す基板B1を用い、ホスホアミダイト法でプローブDNAが固定されたDNAチップを作成する場合を例にして説明する。まず、基板B1を用意する。基板B1は、図11で模式的に示すように、基板B1にアレイ状に配列している総てのウェル13は、その底面にのみ、末端をDMTで保護されたオリゴヌクレオチドスペーサ5Tからなるスペーサ層135が固定されている。工程b1:ウェルに樹脂マスキングを行う。具体的には、配列するウェルのうち、例えばDNAホスホアミダイトCCytosineとの化学合成を行わせるウェルを除き、他のウェルの総てに樹脂液滴6を充填する。図12で示すように、樹脂液滴6が充填されたウェル内のオリゴヌクレオチドスペーサ5Tは樹脂で封止されるが、樹脂液滴6が充填されていないウェル内のオリゴヌクレオチドスペーサ5Tは末端のDMTが脱離可能な状態にある。工程b2:基板上面全体に、トリクロロ酢酸のような酸液を均等に供給して脱トリチル化処理Detritilationを行う。その結果、図13で示すように、樹脂液滴が充填されていないウェルでは、オリゴヌクレオチドスペーサ5TのDMTが脱離して、そこのオリゴヌクレオチドスペーサ5Tは活性化する。このようにして、基板B1に設けられたウェルのうち、特定のウェル樹脂液滴を充填しないウェル内のオリゴヌクレオチドスペーサ5TのみがDNAホスホアミダイトCと反応可能な状態になる。工程b3:基板表面に、有機溶媒を供給して、ウェルに充填されている樹脂液滴を溶解及び除去する。その結果、図14で示すように、基板に配列しているウェルの底面には、活性化したオリゴヌクレオチドスペーサ5Tと、末端をDMTで保護されているオリゴヌクレオチドスペーサ5Tが表出する。工程b4:基板の表面全体に、末端がDMTで保護されたDNAホスホアミダイトCの試薬を均等に供給してDNA合成Couplingを行う。その結果、図15で示すように、特定のウェル内では、活性化していたオリゴヌクレオチドスペーサ5Tと供給されたDNAホスホアミダイトCとの間で合成反応が進行して両者は化学結合し、オリゴヌクレオチドは1mer伸長する。そして伸長したオリゴヌクレオチドの末端はDMTで保護される。他方、残りのウェル内では、表出するオリゴヌクレオチドスペーサ5Tは末端がDMTで保護されているので不活性である。そのため、供給されたDNAホスホアミダイトCとの間で合成反応は進まない。このように、工程b1~工程b4を1サイクルとするDNA合成反応を進めることにより、樹脂液滴を充填しないウェルでのみオリゴヌクレオチドは上記1サイクルで1mer伸長し、樹脂液滴を充填したウェルでは合成反応開始前の状態が維持される。そして、反応させるDNAホスホアミダイトはT、A、C、Gの4種類であるので、さらにウェルに固定されているオリゴヌクレオチドを1mer伸長させるためには上記したサイクルを4回実施すればよい。このようにして、基板B1のウェルの底面でのみ、設計図に基づいた配列のプローブDNAを固定することができる。この基板B1を用いてDNAチップを作成する場合、DNA合成反応はウェルの底面でのみ進行し、他の部分は合成反応に全く関与しない。したがって、例えば、工程b1で充填する樹脂液滴がウェルから仮に溢れ出たとしても、それが隣接するウェルに流入しない限り、DNA合成反応とは無関係であり、蛍光識別時に何の悪影響も及ぼさない。また従来の基板Aの場合に行っていた不活性処理Cappingも行う必要がない。なお、以上の説明において、基板B1,B2,B3,B4はいずれも、基板B0のSi酸化物層の表面にシラン層を形成することにより、プローブDNAの合成反応を可能にするDNAチップ用基板に関するものである。しかし、第1の実施の形態に係るバイオチップ用基板はこれに限定されるものではなく、ウェルの底面反応領域を構成する材料として、被検対象の生体物質と特異的な結合をする生体物質を固定できる材料を選定することにより、各種のチップを製造することが可能である。例えば図1で示す基本構造の基板B0のSi酸化物層の表面に、被検対象の生体物質と特異的な結合をする各種のリンカー成分を固定することにより、その部分を生体物質に対する反応領域に特化させることができる。その場合、基板における他の部分はその生体物質にとっての非反応領域となり、2つの領域の境界は画分されることになる。例えばリンカー成分として、アミノプロピルメトキシシランのようなシランカップリング剤や、エポキシ基、トシル基、活性化カルボキシル基、アミノ基、チオール基、ブロモアトアミド基のような官能基を有するものを用いれば、アミノ基、チオール基、水酸基、カルボキシル基、ブロモアトアミド基などを末端にもつ生体物質をリンカー成分を介して基板B0のSi酸化物層の表面に固定することができる。また生体物質として、2本鎖DNA、タンパク質、ペプチド、糖鎖、RNA―タンパク質複合体、糖質―タンパク質複合体を用いれば、2本鎖DNAの特異的塩基配列を認識して結合する転写因子群を検出するチップ、ペプチド検出用チップ、タンパク質検出用チップ、糖鎖検出用チップ、タンパク質を消化するためのチップなどを製造することができる。第2の実施の形態SOIウェハを出発素材とし、図3から図7で示した工程を経て、最終的に図2で示した構造のバイオチップ用基板B1を製造した。このバイオチップ用基板B1の仕様は以下の通りである。大きさは1cm×1cm、ウェルの形状は直径300μm、深さ20μmである。このウェルが基板上に縦9個、横14個格子状に形成されている。シランカップリング層は、56エポキシトリエトキシシランを用いて形成され、オリゴヌクレオチドスペーサ層はDNA合成試薬を用いたホスホアミダイト法で形成されている。このバイオチップ用基板B1を用い、ホスホアミダイト法を適用して、ウェル内に、下記の配列のプローブDNAを合成してDNAチップを作成する。13’ATCTCACACGTCAAATAG5’23’ATCTCACTCAAATAG5’33’ATCTCACGCAAATAG5’43’ATCTCACCCAAATAG5’53’ATCTCACACAAATAG5’63’ATCTCACCAAATAG5’このDNAチップを用いて、蛍光標識されたターゲットDNAの検出試験を行った結果を図16に示す。ここで、プローブ4のスポットの蛍光強度が最も高いため、ターゲットDNAの配列は、5’TAGAGTGGGTTTATC3’であることが分かる。なお、プローブ2、プローブ3、プローブ5は、いずれも、配列の中心に位置する塩基がミスマッチしている。またプローブ1は塩基配列が長すぎ、プローブ6は短かすぎてミスマッチしている。比較のために、特表2002-537869号公報に開示されている方法に準拠して不活性化処理Cappingを行って、図67で示した構造の基板Aを製造する。そしてこの基板Aを用い、第2の実施の形態に係るDNAチップと同様にして6種類の配列のプローブDNAを移植してDNAチップを作成し、ターゲットDNAの検出試験を行った結果を図17に示す。この場合もプローブ4のスポットにおける蛍光強度が最も高く、ターゲットDNAの配列が5’TAGAGTGGGTTTATC3’であることが分かる。しかし図17から明らかなように、従来の基板Aから作成したDNAチップでは、各スポットの周囲も蛍光発色している。そのためバックグラウンドノイズが発生し、発光スポットと基板表面との境界が不鮮明になっている。これは、基板製造時における樹脂液滴のウェルへの充填時に、樹脂液滴がウェルからその周辺に溢れ出て、その部分が不活性化処理されなかった結果である。また、プローブ4のスポットの場合、スポットの中心部における蛍光発色が弱い。これは、樹脂液滴の充填量が過少であったためである。しかし、全体の蛍光強度が高いのは、ここに移植されているプローブDNAがターゲットDNAと相補関係にあるからである。この従来の基板Aと対比すると、第2の実施の形態のバイオチップ用基板B1から作成されたDNAチップは、発光スポットと基板表面との境界が極めて明瞭であり、バックグラウンドノイズの発生は実質的にないといってもよい。また、各発光スポットにおける蛍光強度も均質化していて、測定データは安定している。第3の実施の形態本発明の第3の実施の形態に係るバイオチップ用基板は、図18、図18のAA方向から見た断面図である図19に示すように、半導体基板15、半導体基板15上に配置され、酸化珪素からなり、表面に水酸基を導入可能な第1の層13、第1の層13上に配置され、第1の層13に達する複数のウェル41a41b41c41d41e41f41g41h41i42a42b42c42d42e42f42g42h42i43a43b43c43d43e43f43g43h43i44a44b44c44d44e44f44g45a45b45c45d45e45f45g46a46b46c46d46e46f46g47a47b47c47d47e47f47g47h47i48a48b48c48d48e48f48g48h48i49a49b49c49d49e49f49g49h49iを有する第2の層11を有する。第2の層11は第1の層13と異なる材料からなり、第2の層11と比較して表面に水酸基を導入しにくい結晶シリコン等の材料からなる。第1の層13は、第2の層11よりも高い親水性を有する。したがって、第1の層13は第2の層11と比較して容易に水酸化される。さらに図18に示すバイオチップ用基板は、複数のウェル41a~41i42a~42i43a~43i44a~44g45a~45g46a~46g47a~47i48a~48i49a~49iのそれぞれを接続する、第2の層11に設けられた複数の流路31a31b31c31d31e31f31g31h31i32a32b32c32d32e32f32g32h32i33a33b33c33d33e33f33g33h33i34a34b34c34d34e34f34g35a35b35c35d35e35f35g36a36b36c36d36e36f36g37a37b37c37d37e37f37g37h37i38a38b38c38d38e38f38g38h38i39a39b39c39d39e39f39g39hを有する。流路31aは、図19及び図18のBB方向から見た断面図である図20に示すように、ウェル41aとウェル41bを結ぶ溝である。他の複数の流路31b~31i32a~32i33a~33i34a~34g35a~35g36a~36g37a~37i38a~38i39a~39hのそれぞれも、複数のウェル41b~41i42a~42i43a~43i44a~44g45a~45g46a~46g47a~47i48a~48i49a~49iのそれぞれの間に第2の層11に設けられた溝である。複数の流路31a~39hにより複数のウェル41a~49iのそれぞれを同じ溶液で満たすことが可能となる。図19に示すように、複数のウェル41a~41iのそれぞれを介して表出する第1の層13の表面には、生体物質層91a91b91c91d91e91f91g91h91iが配置されている。生体物質層91a~91iのそれぞれにおいては、複数のデオキシリボ核酸、複数のリボ核酸、複数のペプチド核酸、あるいは複数のたんぱく質等の複数の生体分子のそれぞれの官能基が、図21に示すように第1の層13表面の水酸基と共有結合している。生体分子がDNA、RNA、あるいはPNAである場合は、それぞれの配列はターゲットとなる生体分子と相補的となるよう設計される。なお、第1の層13表面に直接生体物質層91a~91iのそれぞれを配置することに第3の実施の形態は限定されない。図22に示す例では、第1の層13の複数のウェル41a~41iのそれぞれを介して表出する部分の表面上に、シランカップリング層81a81b81c81d81e81f81g81h81iが配置されている。シランカップリング層81a~81iのそれぞれにおいては、図23に示すように、複数のシランカップリング剤のそれぞれのメチル基あるいはエチル基が第1の層13表面の水酸基と酸塩基反応で化学結合している。複数のシランカップリング剤のそれぞれには、3グリシドキシプロピルトリメトキシシラン、3グリシドキシプロピルメチルジエトキシシラン、3グリシドキシプロピルトリエトキシシラン、N2アミノエチル3アミノプロピルメチルジメトキシシラン、N2アミノエチル3アミノプロピルトリメトキシシラン、N2アミノエチル3アミノプロピルトリエトキシシラン、3アミノプロピルトリメトキシシラン、3アミノプロピルトリエトキシシラン等が使用可能である。シランカップリング層81a~81iのそれぞれの上には、生体物質層91a91b91c91d91e91f91g91h91iが配置されている。生体物質層91a~91iのそれぞれにおいては、例えば、複数の生体分子のそれぞれに導入された活性エステルがシランカップリング剤のアミノ基とアミド結合している。あるいは、シランカップリング剤と生体分子は架橋剤を介して結合してもよい。例えば、受容体、リガンド、アンタゴニスト、抗体、抗原等のタンパク質に含まれるリジンのアミノ基、アスパラギン酸及びグルタミン酸のカルボキシル基、チロシンのフェノール基、ヒスチジンのイミダゾール基、システインのチオール基等の官能基と、シランカップリング剤のアミノ基やエポキシ基とを架橋剤で結合してもよい。図24に示す例においては、シランカップリング剤のアミノ基と抗体95a95b95cのアミノ基とを、両端でアミノ基と反応する架橋剤であるジスクシンイミジルスベレートで結合している。架橋剤としては、他に、両端でアミノ基と反応するビスサルフォスクシンイミジルスベレート、ジメチルスベルイミデート、ジスクシンイミジルグルタレート、ローマン試薬、33ジチオビスサルフォスクシンイミジルプロピオネート、エチレングリコールビススクシンイミジルスクシネート、アミノ基とカルボキシル基と反応する1エチル33ジメチルアミノプロピルカルボジイミドヒドロクロライド等が使用可能である。またさらに架橋剤としては、アミノ基とチオール基と反応するmマレイミドベンジルNヒドロキシスクシンイミドエステル、スクシンイミジル4Nマレイミドメチルシクロヘキサン1カルボキシレート、スクシンイミジル4pマレイミドフェニルブチレート、Nスクシンイミジル3プロピオネート、Nサルフォスクシンイミドエステル、サルフォスクシンイミジル63プロピオンアミドヘキサノエートpropionamidehexanoateSulfoLCSPDP、mマレイミドベンゾイルNヒドロキシサルフォスクシンイミドエステル、サルフォスクシンイミジル4シクロヘキサン1カルボキシレート、サルフォスクシンイミジル4ブチレート等が使用可能である。図18に示す他の複数のウェル42a~42i43a~43i44a~44g45a~45g46a~46g47a~47i48a~48i49a~49iのそれぞれの断面図は、図19あるいは図22と同様であるので説明は省略する。なお、図19及び図22に示す第1の層13の材料にはSiO2以外にシリカガラス等が使用可能である。この場合、半導体基板15は省略してもよい。また第2の層11の材料には結晶Si以外に、ポリテトラフルオロエチレン、不溶性エポキシ系レジスト等の樹脂が使用可能である。図18乃至図24に示したバイオチップ用基板の上部には、図25及び図25のAA方向から見た断面図である図26に示すように、開口27及び開口28を有するカバープレート25が配置される。カバープレート25の材料としては、石英ガラス、アクリル樹脂、及びポリカーボネート等が使用可能である。図18に示すバイオチップ用基板上部にカバープレート25が配置された場合の、AA方向から見た断面図を図27に示す。開口27からCy3あるいはCy5等の蛍光試薬でラベルされた生体分子サンプルを含む検査溶液が注入され、開口28より内部の空気が吸引されると、ウェル41a~41i、及び流路31a~31iのそれぞれは順次検査溶液で充填されていく。さらに、図18に示す他の複数のウェル42a~42i43a~43i44a~44g45a~45g46a~46g47a~47i48a~48i49a~49i、及び他の複数の流路32a~32i33a~33i34a~34g35a~35g36a~36g37a~37i38a~38i39a~39hのそれぞれも順次検査溶液で充填される。したがって、図27に示す生体物質層91a~91iに固定された生体分子と相補的に結合するターゲット生体分子が検査溶液に含まれている場合、ターゲット生体分子は生体物質層91a~91iにトラップされる。そのため、検査溶液中に含まれるサンプル生体分子を予めCy3等の蛍光試薬で標識しておけば、検査溶液を吸引した後、複数のウェル41a~41i42a~42i43a~43i44a~44g45a~45g46a~46g47a~47i48a~48i49a~49i、及び複数の流路31a~31i32a~32i33a~33i34a~34g35a~35g36a~36g37a~37i38a~38i39a~39hのそれぞれを洗浄した後、蛍光反応を確認することで、検査溶液中にターゲット生体分子が含まれていたかどうかを確認することが可能となる。なお、複数のウェル41a~41i42a~42i43a~43i44a~44g45a~45g46a~46g47a~47i48a~48i49a~49iのそれぞれの直径を600mm以上にすれば、肉眼で蛍光反応を確認することも可能である。以上、図18乃至図27に示したバイオチップ用基板は、複数のウェル41a~41i42a~42i43a~43i44a~44g45a~45g46a~46g47a~47i48a~48i49a~49i、及び複数の流路31a~31i32a~32i33a~33i34a~34g35a~35g36a~36g37a~37i38a~38i39a~39hのそれぞれが第2の層11上に設けられているため、カバープレート25を配置する際に高精度な位置あわせが必要ない。また、必要な検査溶液の量は、複数のウェル41a~41i42a~42i43a~43i44a~44g45a~45g46a~46g47a~47i48a~48i49a~49i、及び複数の流路31a~31i32a~32i33a~33i34a~34g35a~35g36a~36g37a~37i38a~38i39a~39hのそれぞれを充填するに足る量でよいので、希少サンプルの検査も容易になる。また、複数の流路31a~31i32a~32i33a~33i34a~34g35a~35g36a~36g37a~37i38a~38i39a~39hが設けられているため、複数のウェル41a~41i42a~42i43a~43i44a~44g45a~45g46a~46g47a~47i48a~48i49a~49iのそれぞれをスポッタ等の装置で個別に検査溶液で充填する必要がなく、検査時間の短縮をも可能とする。次に、図28乃至図49を用いて、第3の実施の形態に係るバイオチップ用基板の製造方法について説明する。まず図28に示すように、半導体基板15、半導体基板15上に配置されたSiO2からなる第1の層13、第1の層13上に配置された結晶Siからなる第2の層11、第2の層11上に配置された自然酸化膜12を有するSOI基板を用意する。次に図29に示すように、自然酸化膜12上にレジスト21をスピン塗布する。リソグラフィ技術によりレジスト21の一部を除去し、図30に示すように開口51a51b51c51d51e51f51g51h51iのそれぞれを設ける。次に開口51a~51iのそれぞれから表出する自然酸化膜12及び第2の層11の一部を異方性エッチング等により選択的に除去し、図31及び図31のAA方向から見た断面図である図32に示すように流路31a~31i32a~32i33a~33i34a~34g35a~35g36a~36g37a~37i38a~38i39a~39hのそれぞれを第2の層11に形成させる。図33に示すように、自然酸化膜12上にレジスト22をスピン塗布する。その後リソグラフィ技術によりレジスト22の一部を除去し、図34に示すように開口61a61b61c61d61e61f61g61h61iのそれぞれを設ける。次に開口61a~61iのそれぞれから表出する自然酸化膜12及び第2の層11の一部を異方性エッチング等により第1の層13が表出するまで選択的に除去し、図35に示すようにウェル41a~41iのそれぞれを第2の層11に形成させる。SOI基板を撹拌された水酸化ナトリウム溶液中に室温で2時間放置する。ここでNaOH溶液とは、98gのNaOH、294mlの蒸留水、及び392mlのエタノールを混合した溶液である。NaOH溶液中に放置することにより、図36に示すように第2の層11表面の自然酸化膜12が除去される。さらにウェル41a~41iのそれぞれから表出する第1の層13の表面に、図37に示すように、複数の水酸基が導入される。3グリシドキシプロピルメチルジエトキシシラン、3グリシドキシプロピルトリエトキシシラン等の官能基にエポキシを有するシランカップリング剤、あるいはN2アミノエチル3アミノプロピルトリエトキシシラン、3アミノプロピルトリメトキシシラン、3アミノプロピルトリエトキシシラン等の官能基にアミンを有するシランカップリン剤等を図36に示すウェル41a~41iのそれぞれから表出する第1の層13の表面上に滴下し、図38に示すシランカップリング層81a81b81c81d81e81f81g81h81iのそれぞれを形成させる。例えば、3アミノプロピルトリメトキシシランを滴下した場合、図39に示すように、第1の層13表面に複数のアミノ基が導入される。なお、第1の層13表面に残った未反応のOH基は、例えば、無水酢酸と1メチルイミダゾールテトラヒドロフラン溶液で処理してアセチル化し、キャッピングする。活性エステルが導入され、5’末端がジメトキシトリチル基で保護、及び図40に示すようにアデニン、シトシン、及びグアニン等の塩基のアミノ基が保護された1塩基目のヌクレオシドを図38に示すシランカップリング層81aに滴下する。アデニンとシトシンのアミノ基はベンゾイル基で保護されている。グアニンのアミノ基はイソブチル基で保護されている。滴下により、1塩基目のヌクレオシドの活性エステルとシランカップリング剤のアミノ基とを反応させ、図41に示すように、アミド結合を形成させる。次に、1塩基目のヌクレオシドのジメトキシトリチル基を3トリクロロ酢酸ジクロロメタン酸性溶剤で脱保護し、図42に示すように5’水酸基を1塩基目のヌクレオシドに導入する。テトラゾールと図43に示すヌクレオシドホスホロアミダイトをシランカップリング層81a~81iに滴下し、1塩基目のヌクレオシドの5’水酸基にヌクレオシドホスホロアミダイトのNNジイソプロピルアミノ基を縮合反応させる。縮合反応により、図44に示すように、1塩基目のヌクレオシドに2塩基目のヌクレオシドが共有結合される。なお、1塩基目のヌクレオシドの未反応の5’水酸基は無水酢酸と1メチルイミダゾールテトラヒドロフラン溶液で処理してアセチル化し、キャッピングする。縮合反応で生じた亜リン酸トリエステル結合は、ヨウ素と水ピリジン含有テトラヒドロフラン溶液で酸化し、図45に示すように、より安定なリン酸トリエステル結合に変換させる。その後、2塩基目のジメトキシトリチル基を除去し、図46に示すように目的のDNA鎖長になるまでヌクレオシドホスホロアミダイトとの縮合反応を繰り返す。アンモニア水処理により、図47に示すように、リン酸基に結合したシアノエチル保護基を脱離させる。また、図40に示したアミノ基が保護された塩基をアンモニア水で図48に示すように脱保護する。最後に末端のジメトキシトリチル基を図49に示すように脱保護する。図41乃至図49に示した工程を図38に示したシランカップリング層81b~81iのそれぞれについても実施し、図22に示すように生体物質層91a~91iを形成させる。以上示した第3の実施の形態に係るバイオチップ用基板の製造方法によれば、図36で説明したように、NaOH溶液でSOI基板を処理することにより、第1の層13の表面のみに水酸基が導入される。また、第2の層11がSiである場合、自然酸化膜12の膜厚は通常2nm以下であるが、室温で2時間NaOH溶液に浸すことにより自然酸化膜12は除去される。そのため、後の工程で滴下されるシランカップリング剤は第1の層13表面の水酸基のみと反応し、第2の層11表面には結合しない。従来においては、残存する自然酸化膜12にシランカップリング剤が結合すると、自然酸化膜12上にも蛍光標識されたターゲット生体分子が結合し、バックグランドノイズになることがあった。特に微量検定においては、複数のウェル41a~41i41b~41i42a~42i43a~43i44a~44g45a~45g46a~46g47a~47i48a~48i49a~49iのそれぞれの底部にのみターゲット生体分子がトラップされ、第2の層11上にはターゲット生体分子がトラップされないようにして、蛍光検定のコントラストの向上を図ることを可能にする技術の登場がのぞまれていた。これに対し、第3の実施の形態に係るバイオチップ用基板の製造方法によれば、第1の層13表面にのみ水酸基を導入し、かつ同時に第2の層11表面の自然酸化膜12を除去することを可能とする。そのため、バックグランドノイズの極めて低いバイオチップ用基板の製造が可能となる。図50は、図18に示したウェル41a~42i42a~42iが、蛍光試薬でラベルされたサンプルDNAで、図21に示した生体物質層91aに固定されたDNAと相補的な配列を有するものを含む検査溶液にさらされた時の顕微鏡写真の一例を示している。図50は、図62乃至図67に示した従来のバイオチップ用基板が蛍光試薬でラベルされたサンプルDNAで、基板に固定されたDNAと相補的な配列を有するものを含む検査溶液にさらされた時の顕微鏡写真の一例を示している。従来の基板では、サンプルDNAがウェルの底だけでなく、他の領域にも結合していることが分かる。また、ウェルの底にもコンタミネーションが観察される。しかし、第3の実施の形態に係るバイオチップ用基板は、図50に示すように、ターゲットDNAをウェルの底だけにハイブリダイズすることが可能である。また、ウェルにおける蛍光の均一性をも実現している。なお図30乃至図35においては、先に複数の流路31a~31i32a~32i33a~33i34a~34g35a~35g36a~36g37a~37i38a~38i39a~39hのそれぞれを形成した後に、複数のウェル41a~41i41b~41i42a~42i43a~43i44a~44g45a~45g46a~46g47a~47i48a~48i49a~49iのそれぞれを形成する方法を説明したが、先に複数のウェル41a~41i41b~41i42a~42i43a~43i44a~44g45a~45g46a~46g47a~47i48a~48i49a~49iのそれぞれを形成した後に複数の流路31a~31i32a~32i33a~33i34a~34g35a~35g36a~36g37a~37i38a~38i39a~39hのそれぞれを形成してもよい。ただし、複数の流路31a~31i32a~32i33a~33i34a~34g35a~35g36a~36g37a~37i38a~38i39a~39hのそれぞれの深さの方が、複数のウェル41a~41i41b~41i42a~42i43a~43i44a~44g45a~45g46a~46g47a~47i48a~48i49a~49iのそれぞれの深さよりも浅いため、先に複数の流路31a~31i32a~32i33a~33i34a~34g35a~35g36a~36g37a~37i38a~38i39a~39hのそれぞれを形成した方がレジストの均一なスピン塗布が容易になる。また、図38乃至図49においては、第1の層13上にシランカップリング層81a~81iを形成した後に生体物質層91a~91iを形成する方法を説明したが、図37に示した複数の水酸基のそれぞれに生体分子をシランカップリング層81a~81iを介さずに固定してもかまわないのは勿論である。さらに、図28乃至図49においては、SOI基板を使用する例を示したが、ガラス基板とポリテトラフルオロエチレン基板の貼り合わせ基板を使用してバイオチップ用基板を製造してもよい。すなわち、第1の層13にガラス基板を用い、第2の層11にポリテトラフルオロエチレン基板を用いることにより、SOI基板と同様にバイオチップ用基板を製造することが可能である。第1の変形例バイオチップ用基板の製造方法は、以上示した方法に限定されない。以下、エポキシ系ネガ型レジストを用いたバイオチップ用基板の製造方法について説明する。図51に示すガラス等からなる第1の層115の表面にエポキシ系ネガ型の第1レジスト111をスピン塗布する。次に、図52に示すように、形成されるウェルに対応する遮光パターン140a140b140cを有するフォトマスク40を用いて第1レジスト111を露光する。図53に示すように、第1レジスト111の表面に、さらにエポキシ系ネガ型の第2レジスト211をスピン塗布し、第2の層11を形成させる。次に、図54に示すように、形成されるウェル及び流路に対応する遮光パターン150を有するフォトマスク50を用いて第2レジスト211を露光する。第1レジスト111及び第2レジスト211をベーク処理する。なお、ベーク処理により、第1レジスト111及び第2レジスト211のそれぞれは緩衝液等に対して不溶性になる。その後、アルカリ現像液等で現像処理を行うことにより、図55に示すようにウェル41a~41i及び流路31a~31iのそれぞれが第2の層11に形成される。以下、図37乃至図49に示した方法を実施することにより、バイオチップ用基板が完成する。その他の実施の形態上記のように、本発明は実施の形態によって記載したが、この開示の一部をなす記述及び図面はこの発明を限定するものであると理解するべきではない。この開示から当業者には様々な代替実施の形態、実施の形態及び運用技術が明らかになるはずである。例えば、図56及び図56のAA方向から見た断面図である図57に示す第2の変形例に係るバイオチップ用基板は、図18及び図19に示したバイオチップ用基板と異なり、複数の流路31a~31i32a~32i33a~33i34a~34g35a~35g36a~36g37a~37i38a~38i39a~39hのそれぞれが第2の層11に設けられていない。一方、図58及び図58のBB方向から見た断面図である図59に示す第2の変形例に係るカバープレート25は、図25及び図26に示したカバープレート25と異なり、図56及び図57に示したバイオチップ用基板と貼り合わされた場合に、複数のウェル41a~41i41b~41i42a~42i43a~43i44a~44g45a~45g46a~46g47a~47i48a~48i49a~49iのそれぞれを接続する流路300を有する。図56に示すバイオチップ用基板上に図58に示すカバープレート25を貼り合わせた場合の断面図である図60に示すように、開口27から注入される検査溶液はウェル41aを充填した後、流路300を辿って順次ウェル41b~41iを充填していく。したがって、第3の実施の形態と同様、図56に示すバイオチップ用基板及び図58に示すカバープレート25を用いることにより、必要な検査溶液の量を減少させることが可能となる。この様に、本発明はここでは記載していない様々な実施の形態等を包含するということを理解すべきである。したがって、本発明はこの開示から妥当な特許請求の範囲の発明特定事項によってのみ限定されるものである。"