"下記iまたはiiの配列を含む核酸アプタマーからなるカンプトテシン類結合剤。iGGGNGGGNGGGNGGG配列番号1iiGGGNGGGNGGGNNGGG配列番号2NはATGまたはCを示す。iまたはiiの配列を含む核酸アプタマーが、配列番号6~9および12~18のいずれかの塩基番号21~50の配列、配列番号10の塩基番号21~51の配列、配列番号11もしくは20の塩基番号21~49の配列、配列番号19の塩基番号21~52の配列、配列番号23の塩基番号14~40の配列、または配列番号21の塩基番号21~54の配列を含む核酸アプタマーである、請求項1に記載のカンプトテシン類結合剤。配列番号28~32、35~43および45~59のいずれかの塩基番号21~50の配列、配列番号44の塩基番号21~51の配列、または配列番号60の塩基番号21~48の配列を含む核酸アプタマーからなるカンプトテシン類結合剤これらの配列における修飾Tとは下記の式Iで表される化合物の残基を示す。。核酸アプタマーが一本鎖DNAである、請求項1~3のいずれか一項に記載のカンプトテシン類結合剤。請求項1~4のいずれか一項に記載のカンプトテシン類結合剤と、カンプトテシン類とを含む抗癌剤。下記Iの式で表される化合物又はその塩。下記IIまたはIIIの式で表される化合物又はその塩。本発明の目的は、カンプトテシン類に対し特異的に認識し結合する核酸アプタマーを提供することである。本発明者は上記課題を解決するために鋭意検討を行った。その結果、配列番号1,2等の特定の配列を含む核酸アプタマーがカンプトテシン類に特異的に結合することを見出し、それにより、抗癌剤やカンプトテシン類の薬理効果や薬物動態の測定に利用できることを見出して、本発明を完成させるに至った。すなわち、本発明は以下のいずれかの配列を含む核酸アプタマーからなるカンプトテシン類結合剤を提供する。iGGGNGGGNGGGNGGG配列番号1iiGGGNGGGNGGGNNGGG配列番号2ここで、NはATGまたはCを示す。iまたはiiを含む配列としては、配列番号6~9および12~18のいずれかの塩基番号21~50の配列、配列番号10の塩基番号21~51の配列、配列番号11もしくは20の塩基番号21~49の配列、配列番号19の塩基番号21~52の配列、配列番号23の塩基番号14~40の配列、または配列番号21の塩基番号21~54の配列であることがより好ましい。また、核酸アプタマーは修飾塩基を含むものでもよい。すなわち、本発明はまた、配列番号28~32、35~43および45~59のいずれかの塩基番号21~50の配列、配列番号44の塩基番号21~51の配列、または配列番号60の塩基番号21~48の配列を含む核酸アプタマーからなるカンプトテシン類結合剤を提供する。なお、これらの配列における修飾Tとは下記の式Iで表される化合物の残基を示す。本発明はまた、下記Iの式で表される化合物又はその塩を提供する。塩としては金属塩が例示される。この化合物はチミジン三リン酸の誘導体である。したがって、修飾ポリヌクレオチドの作製などに使用することができる。本発明はまた、下記IIまたはIIIの式で表される化合物又はその塩を提供する。塩としては酸付加塩が例示される。これらは抗癌剤として知られるカンプトテシンの誘導体である。したがって、これらの化合物は単独または薬学的に許容される担体と組み合わせて抗癌剤として使用することができる。投与量、投与経路、剤形、組み合わせる担体等は、抗癌剤としての使用態様は抗癌剤として公知のカンプトテシン誘導体に準じて決定することができる。なお、本発明において、カンプトテシン類とはカンプトテシンに限られず、カンプトテシンの骨格を含むものであればよいが、例えば、トポテカン、イリノテカン、DB67、BNP1350、エキサテカン、ルートテカン、ST1481、CKD602および上述した化合物II、IIIなども挙げられる。核酸アプタマーとは好ましくはDNAであり、より好ましくは一本鎖DNAである。核酸アプタマーは修飾されたものであってもよい。例えば、核酸アプタマーの安定性を増加させるために、ホスホロチオエートまたはホスホロジチオエート修飾することも可能である。また、蛍光物質等で標識されたものでもよい。核酸アプタマーの長さは、好ましくは15~100塩基であり、より好ましくは20~60塩基である。本発明において新たに開発した核酸アプタマーは、カンプトテシン類を特異的に認識し結合することができるため、薬物検出のための分子プローブや、DDSの薬物キャリア分子として、抗がん剤の薬理効果や薬物動態などの検証研究や、DDSによるがん治療に応用されることが期待できる。核酸は、1生体の拒絶反応を抑制できる、2細胞表面の特定の分子等を特異的に認識する他の核酸アプタマーや抗体などと容易に連結できる、3核酸同士で連結する場合、ドラッグリリースなどのインテリジェント機能を容易に持たせることができる、などの点でポリマーを用いた方法より有利と考えられている。以下に本発明を詳しく説明する。本発明のカンプトテシン類結合剤の一態様は、下記iまたはiiの配列を含む。iGGGNGGGNGGGNGGG配列番号1iiGGGNGGGNGGGNNGGG配列番号2ここで、NはATGまたはCを示す。具体的には配列番号6~9および12~18のいずれかの塩基番号21~50の配列、配列番号10の塩基番号21~51の配列、配列番号11もしくは20の塩基番号21~49の配列、配列番号19の塩基番号21~52の配列、配列番号23の塩基番号14~40の配列または配列番号21の塩基番号21~54の配列が挙げられる。なお、カンプトテシン類の少なくとも一種類に結合する能力が維持される限り、これらの配列において1~数個、例えば、1、2または3個の塩基が置換、欠失、挿入等されてよい。また、カンプトテシン類の少なくとも一種類に結合する能力が維持される限り、5’側および/または3’側に任意の長さの任意の配列が付加されてよい。また、本発明のカンプトテシン類結合剤の他の態様は、配列番号28~32、35~43および45~59のいずれかの塩基番号21~50の配列、配列番号44の塩基番号21~51の配列、または配列番号60の塩基番号21~48の配列を含む修飾塩基を含む核酸アプタマーであってもよい。なお、カンプトテシン類の少なくとも一種類に結合する能力が維持される限り、これらの配列において1~数個、例えば、1、2または3個の塩基が置換、欠失、挿入等されてよい。また、カンプトテシン類の少なくとも一種類に結合する能力が維持される限り、5’側および/または3’側に任意の長さの任意の配列が付加されてよい。また、図1より、下記のようなコンセンサスが抽出できるので、下記のような配列を含む核酸アプタマーもカンプトテシン類結合剤として使用可能である。ACGtAGGGtGGtCAtAGtAtCtGGGAAACGGGtGGtttAAAGGtXXXXXXXXXXXXXGttXCAtCCCGtt...tAACCGCCttAAGtXAtGGCG...CCtXtGXACGCCAtCTTCAAAAA...CttttCAGGGGXAtXXXCtAここで、Xは任意の塩基好ましくはAGCまたはtを示し、tとは式Iの化合物の塩基部分である。本発明のカンプトテシン類結合剤は、カンプトテシン類検出のための分子プローブとして使用することができる。例えば、核酸アプタマーを蛍光色素などで標識し、カンプトテシン類と複合体を形成させて、カンプトテシン類の体内動態などをトレースすることができる。また、本発明の核酸アプタマーとカンプトテシン類の複合体は、抗癌剤として使用することができる。好ましくは、DDS薬剤伝達システムのために、アプタマーに、標的癌組織にカンプトテシン類を特異的に集積させるための物質を結合させることが好ましい。標的癌組織にカンプトテシン類を特異的に集積させるための物質としては、標的癌組織の細胞表面に出ているタンパク質や糖鎖などに特異的に結合する物質が好ましく、抗体などのタンパク質や細胞表面の特定の分子等を特異的に認識する他の核酸アプタマーがより好ましい。アプタマーにそのような物質を結合させる技術は公知であるが、例えば、カンプトテシン類との結合に関与する配列に、別の配列結合に影響を与えない配列を付加し、それにビオチンを結合させ、一方、抗体をアビジンで標識して、抗体とアプタマーを結合させ、アプタマー-カンプトテシン類-抗体の複合体を作製することができる。以下に実施例を示し、本発明をさらに具体的に説明する。もっとも、本発明は下記実施例に限定されるものではない。カンプトテシン誘導体の合成以下の手順により、Camptothecinderivative1化合物eおよびCamptothecinderivative2化合物cを合成した。Camptothecinを75H2SO4に氷冷下で溶解した。FeSO47H2Oを水に溶かし、氷冷下でCamptothecin溶液に加えた。ClCH2CHOを氷浴下でCamptothecin溶液に加えた。十分に溶液を撹拌後、氷冷下で30H2O2を滴下し、5min氷冷下で撹拌後、室温で15h撹拌。氷冷下で冷水を反応液に加え、懸濁させた。セライトを用いて反応液を吸引ろ過し、残渣をDMFで回収し、減圧留去した。残渣をクロロホルムヘキサン73溶液で懸濁させ、吸引ろ過を行うことにより、黄色の粉末状化合物1を得た。また、ろ液をシリカゲルクロマトグラフィーで精製することにより、化合物aを得た。収量164mg収率72ESIMS実測値4192計算値4191MNa1HNMRδ842827794783656545539192089化合物aを真空乾燥させ、脱水DMFに溶解した。4piperidineを脱水DMFに溶解し、脱水Tolueneを加え、反応液に加え、2h撹拌した。溶液を減圧留去し、CHCl3に溶解して、飽和食塩水を用いて洗浄し、有機相をMgSO4で乾燥させた。溶液を減圧留去し、シリカゲルカラムクロマトグラフィーによって精製し、化合物bを得た。収量763mg収率18ESIMS実測値5833計算値5833MNa1HNMRδ831819780765760577538406356297234208185175143106化合物bを10TFACH2Cl2に溶解し、15h撹拌した。MeCNで共沸して過剰のTFAを除き、化合物cを得た。収量130mg収率71ESIMS実測値4614計算値4612MH1HNMRδ836814785772759559543459340290215196191141128102化合物cを凍結乾燥させ、脱水DMFを加え溶解させた。O2ethylO2ethyldecaethyleneglycolを脱水DMFに溶解し、HBTU、HOBtH2O、DIPEAを順によく撹拌しながら加え、化合物cの溶液に加えた。室温で2h反応させた。反応液を減圧留去し、CHCl3に溶解し、飽和食塩水で洗浄した。有機相にMgSO4を加え乾燥させ、吸引ろ過し、残渣を減圧留去した。収量302mgESIMS実測値12249計算値12256MNa1HNMRδ839823782773740561529511405364330313297282200191184149106化合物dを10TFACH2Cl2に溶解し、2h撹拌した。MeCNで共沸して過剰のTFAを除いた後、HPLCで精製し、化合物eを得た。収量791mg収率88ESIMS実測値11033計算値11036MH1HNMRδ840821783771764575549410382371364350319313202186176105実施例1Camptothecinderivative1をターゲットとしたSelection<Selectionで使用したBuffer>LCATpH74LCApH74LCBpH74LCB2pH74SCNpH701×CBNOpH83洗浄BufferApH83洗浄BufferBpH40<使用したDNA>MRCT1F5末端FAM標識※これが蛍光滴定の時のRnd70に該当5GGTCAGCACGCTCCGGACTTNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNGTGTCGCTGAGCCTGCCAAC3配列番号3MRCP1F5末端FAM標識5GGTCAGCACGCTCCGGACTT3配列番号4MRCP2P5末端リン酸化5GTTGGCAGGCTCAGCGACAC3配列番号5MRCP1N5GGTCAGCACGCTCCGGACTT3配列番号4MRCP2N5GTTGGCAGGCTCAGCGACAC3配列番号5<アフィニティーゲルの調製>ポジティブセレクション用ゲルの調製HitrapNHSactivatedHPColumnsGEHealthCareLifeSciencesに1mMHClを2ml×3加え、Camptothecinderivative1溶液を1ml加え塩酸を除去し、残りの22mlを1h何度も繰り返し流す。3mlの1×CBNOを加え、続いて。洗浄BufferAを2ml×3、洗浄BufferBを2ml×3、洗浄BufferAを2ml×3加え、30min静置した。その後、洗浄BufferBを2ml×3、洗浄BufferAを2ml×3、洗浄BufferBを2ml×3加えた。1mMHClを1ml×3加え、SCNを2ml×2加えゲルを保存した。ネガティブセレクション用ゲルの調製HitrapNHSactivatedHPColumnsに1mMHClを2ml×3加え、洗浄BufferAを2ml×3、洗浄BufferBを2ml×3、洗浄BufferAを2ml×3加え、30min静置した。その後、洗浄BufferBを2ml×3、洗浄BufferAを2ml×3、洗浄BufferBを2ml×3加えた。1mMHClを1ml×3加え、SCNを2ml×2加えゲルを保存した。<AffinityChromatographyによるスクリーニング>化学合成DNAライブラリーもしくは前ラウンドの結合活性を示す溶出液から調製したDNAライブラリーを1×LCATに溶解し、UV測定後リフォールディング94°C30sec→25°Cした。ネガティブセレクション用ゲル、ポジティブセレクション用ゲルを1×LCAT400μl×4回でBufferを置換し、ネガティブセレクション用ゲルにDNAをインキュベートした。上澄みを回収し、UV測定後、ポジティブセレクション用のゲルにインキュベートした。上澄みを回収し、UVを測定した。ポジティブセレクション用のゲルにLCAを400μl×4回でBufferの置換と未結合DNAの除去を行った。※9ラウンド以降はLCAを400μl入れてインキュベートし、上澄みを除去×5回ポジティブセレクション用のゲルに溶出バッファーを400μL加え、ポジティブセレクション用のゲルに結合しているDNAを溶出させた。溶出した溶液をスピンカラムで脱塩し、凍結乾燥した後、162μlの蒸留水と18μlの10×KODDashBufferを加えて、DNAを溶解した。この溶液を用いてPCRを行った。ポジティブセレクション用ゲルにインキュベートしたDNA量をUVで測定し、溶出されたDNA量を変性PAGEで測定し、その割合からセレクションの進捗状況を確認した。<溶出DNAの増幅>37°Cで溶出した結合活性を示すDNAを、ポリメラーゼ連鎖反応を行うことにより増幅した。反応後のサンプルを少量とり、7MUrea3mMEDTAを含む01BPB溶液を加え、Denatureし、10変性PAGEを用いたゲル電気泳動により反応の進行を確認した。PCRでは、プライマーにMRCP1FおよびMRCP2Pを、酵素にKODDashDNAポリメラーゼを用いた。<一本鎖DNAの調製>1PCR反応液を、ローターバックを用いて凍結乾燥した後、蒸留水に溶解した。3MCH3COONaを加え軽く混ぜ、EtOHを加え、エタノール沈澱を行った。冷凍庫で10min静置した後、遠心し、上澄みを除去し、残渣を一本のマイクロチューブに回収し、凍結乾燥した。残渣の二重鎖DNAをλexonucleaseで、37°Cで30min反応させた。反応後の溶液を少量分取し、7MUrea3mMEDTAを含む01BPB溶液を加え、Denatureし、10変性PAGEを用いたゲル電気泳動を行い、SYBRGoldで染色することにより反応の進行を確認した。λexonucleaseによって一本鎖にしたDNA溶液をエタノール沈澱させた。残渣の一本鎖DNAを蒸留水に再び溶解し、変性PAGEにより精製し、これを次のラウンドのライブラリーに用いた。<アプタマーの単離および配列解析>通常のクローニング法により、濃縮したライブラリーからアプタマーの単離を行った。ベクターに挿入するDNA断片を濃縮したライブラリーからPCRで調製する際のプライマーには、MRCP1NおよびMRCP1Nを用いた。プライマーベクターにはpT7Blueを、コンピテントセルにはCompitenthighEcoilDH5αを用いた。生成した各コロニーからプラスミドを取り出し、それぞれ、シーケンサーで配列解析を行った。<Gelaffinityassay>得られたDNAを1×LCAT70μlに溶かし、アニーリング94°C30sec→25°Cをした。そのうち5μlを別のマイクロチューブに分注した。ネガティブセレクション用ゲルとポジティブセレクション用ゲルそれぞれに1×LCATを400μl加え、ボルテックス、遠心を行い、上澄みを除去した。この操作を4回繰り返すことにより、Bufferを置換した。それぞれのゲルに30μlずつDNA溶液をインキュベートし37°C、1200rpm、1h振とうした。ボルテックスと遠心を行い、上澄みを5μl回収した。インキュベート前のサンプル、ネガティブセレクション用ゲルの上澄みのサンプル、ポジティブセレクション用ゲルの上澄みのサンプルに、7MUrea3mMEDTAを含む01BPB溶液を加え、Denatureし10変性PAGEを用いたゲル電気泳動を行い、バンド強度を次式に導入することにより、標的分子への結合割合を算出した。Bindingratio{NI}×100ここで、NEGはネガティブセレクション用ゲルの上澄み、POSはポジティブセレクション用ゲルの上澄み、NIはインキュベート前の液中のそれぞれのDNA量を示す。セレクションを11ラウンド行った後に、得られた配列を解析したところ、表1の結果が得られた。次に、表1で取得できた配列のうちApt470、Apt1470、Apt2269およびApt440、Apt420コア配列とRnd70ライブラリーについて、蛍光滴定によりカンプトテシン類に対する結合を調べた。<蛍光滴定のプロトコル>DNAの調製滅菌水に溶解したそれぞれのDNAと5×のSelectionbufferを混ぜ、finalで1×のSelectionbufferに溶けているDNA溶液を調製した。化合物溶液の調製それぞれの化合物を滅菌水に溶解し、溶けきれない場合はミリポアフィルターでろ過し、その濾液を使用上記の5×のSelectionbufferと混ぜ、finalで1×のSelectionbifferに溶けている化合物の溶液2μMを調製した。使用したAcridonderivativeの構造は以下の通りである。測定の手順1.各濃度に調製したDNAをアニーリングした。94°C30sec→25°C2.2μMに調製した化合物溶液を、予めマイクロチューブに50μLずつ入れておき、そこへアニーリングした各濃度のDNAを50μLずつ添加し、ボルテックスと遠心を3回行った。インキュベート3.低い濃度のものから蛍光を測定した。その結果、表9に示されるように、Apt470、Apt1470、Apt2269およびApt440はカンプトテシン類に特異的な結合を示したが、Apt420とRnd70は結合しなかった。実施例2:修飾塩基を含むDNAアプタマーのスクリーニングまず、修飾塩基を合成した。KS5の合成6chloro9Hpurineをbutanolwater61混合液に溶かし、ethane12diamineを加え、還流管を設置し、オイルバスで80°Cにし、2時間撹拌した。反応液の減圧留去後、残渣をwaterに溶かし、更にmethanol、butanolを加えよく混ぜ、その後、減圧留去により濃縮し、結晶を析出させた。これを吸引濾過し目的物1を得た。収量306mg収率8851HNMRδ311δ369δ794δ805ESIMSmz帰属Found1791Calc1791KS6の合成52deoxyuridineを脱水DMFに溶かしPyBOP、HOBt、DIPEAを加え、軽く混ぜた。更に、真空乾燥させた1を脱水DMFに懸濁させたものを加え、15時間撹拌した。反応終了後、減圧留去で濃縮し、吸引濾過した。濾液を濃縮後、chloroformを加え沈殿を析出させ、吸引濾過を行い、目的物2を得た。収量2044mg収率8771HNMRδ828δ819δ809δ710δ703δ615δ527δ517δ426δ380δ216ESIMSmz帰属Found4808Calc4812KS7の合成真空乾燥させた2を、脱水pyridineで二回共沸し、脱水Trimethylphosphateに溶かし、氷冷下でPhosphorylchorideを加え、4時間撹拌した。反応終了後、冷水、TEAを加え、10分間撹拌し、クエンチした。減圧留去で濃縮し、acetonitrileとdiethyletherを加え、沈殿物を析出させ吸引濾過で濾物を目的物として回収した。その後、少量の蒸留水に溶かし、陰イオン交換カラムで精製した。収率は、2のモル吸光係数を用いて計算した。収量970OD収率400ESIMSmz帰属Found5367Calc5374KS8の合成真空乾燥させた3を、脱水pyridineで二回共沸し、脱水DMFに溶かし、TEAを加え、5分間撹拌し、Imidzole、Triphenylphosphine、22DipridylDisulfideを加え、室温で3時間撹拌した。反応終了後、sodiumperchlorate、脱水aceton混合溶液に、反応液を加え、4°Cで30分間静置した。沈殿物を脱水acetonで洗浄し、クルードの状態で目的物として得た。収量57mg収率137ESIMSmz帰属Found5689Calc5885KS9の合成真空乾燥させた4を、脱水pyridineで二回共沸し、脱水DMFに懸濁させ、脱水Tributhylamine、05MDiphosphoricacidinDMFを加え、室温で10時間撹拌した。反応終了後、クエンチのためTEABを加え、減圧留去によって濃縮した。diethyletherで洗浄し、水相を減圧留去した。少量の蒸留水に溶かし、陰イオンカラムで精製した。更に、HPLC精製、中圧カラム、陽イオンカラムで精製を行った。収量232OD収率108ESIMSmz帰属Found6970Calc6984Camptothecinderivative1をターゲットとしたSelection<Selectionで使用したbuffer>天然型DNAアプタマーのスクリーニングに用いたものと同じ。<使用したDNA>VITT1H5末端HEX標識※これを鋳型として調製した修飾DNAがRnd70に該当。ゲルアフィニティアッセイに使用5CACCAGAGGCACGCCAGACANNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNCttCGCCGtGCtAGCCGtGt3配列番号25NはAGCまたは修飾T上記で合成した化合物5を示す。VITP1F5末端FAM標識5CACCAGAGGCACGCCAGACA3配列番号26VITP2H5末端HEX標識5ACACGGCTAGCACGGCGAAG3配列番号27VITP1P5末端リン酸標識5CACCAGAGGCACGCCAGACA3配列番号26VITP1N5CACCAGAGGCACGCCAGACA3配列番号26VITP2N5ACACGGCTAGCACGGCGAAG3配列番号27<アフィニティーゲルの調製>天然型DNAアプタマーのスクリーニングの場合と同じ。<初期ライブラリーの合成>2初期ライブラリーは、VITT1Hを鋳型鎖、VITP1Fをプライマー鎖としたプライマー伸長反応により調製した。基質のヌクレオシド三リン酸には天然型のdATP、dCTP、dGTPおよび修飾dTTPを、ポリメラーゼにはKODDashDNAポリメラーゼを用いた。生成した修飾DNAの一本鎖は、変性PAGEにより、鋳型鎖のVITT1Hから分離精製することが可能である。<AffinityChromatographyによるスクリーニング>PAGE精製によって得られた修飾DNAを1×LCATに溶解し、UV測定後リフォールディング94°C30sec→25°Cした。ネガティブセレクション用ゲル、ポジティブセレクション用ゲルを1×LCAT400μl×4回でBufferを置換し、ネガティブセレクション用ゲルにDNAをインキュベートした。上澄みを回収し、UV測定後、ポジティブセレクション用のゲルにインキュベートした。上澄みを回収し、UVを測定した。ポジティブセレクション用のゲルにLCAを400μl×4回でBufferの置換と未結合DNAの除去を行った。ポジティブセレクション用のゲルに溶出バッファーを400μL加え、ポジティブセレクション用のゲルに結合しているDNAを溶出させた。溶出した溶液をスピンカラムで脱塩し、凍結乾燥した後、162μlの蒸留水と18μlの10×KODDashBufferを加えて、DNAを溶解した。この溶液を用いてPCRを行った。ポジティブセレクション用ゲルにインキュベートしたDNA量をUVで測定し、溶出されたDNA量を変性PAGEで測定し、その割合からセレクションの進捗状況を確認した。<溶出DNAの増幅>37°Cで溶出した結合活性を示す修飾DNAを、ポリメラーゼ連鎖反応を行うことにより増幅した。反応後のサンプルを少量とり、7MUrea3mMEDTAを含む01BPB溶液を加え、Denatureし、10変性PAGEを用いたゲル電気泳動により反応の進行を確認した。PCRでは、プライマーにVITP1PおよびVITP2Hを、酵素にKODDashDNAポリメラーゼを用いた。<一本鎖鋳型DNAの調製>PCRで調製した二重鎖DNAをλexonucleaseにより一本鎖にした。前述1と同様に変性PAGEにより精製した。<一本鎖修飾DNAの調製>調製した一本鎖の鋳型鎖とプライマー鎖VITP1Fを用いて、前述2と同様にプライマー伸長反応を行い、一本鎖修飾DNAを調製した。これを次のラウンドのライブラリーに用いた。<アプタマーの単離および配列解析>天然型DNAアプタマーのスクリーニングの場合と同じ。<Gelaffinityassay>天然型DNAアプタマーのスクリーニングの場合と同じ。9ラウンドのセレクションの結果、下記の配列が得られた。※tは上記修飾塩基を示す。これらの配列についてAffinityChromatographyにより、カンプトテシン類との結合を調べた結果、表11のようになった。他にも表12の配列が取得できた。図1に配列解析の結果を示す。いくつかのコンセンサス配列が発見された。"