"多糖類溶液に細胞接着ペプチドを混合し、乾燥、及び再水和することによって得られる多糖類ゲル組成物。多糖類がアガロースである、請求項1に記載の多糖類ゲル組成物。多糖類の量が0.15~15μg/mm2である、請求項1又は2に記載の多糖類ゲル組成物。細胞接着ペプチドの量が3~300pmol/mm2である、請求項1から3の何れか1項に記載の多糖類ゲル組成物。細胞接着ペプチドが、細胞表面受容体のシンデカンに作用するペプチドである、請求項1から4の何れか1項に記載の多糖類ゲル組成物。細胞接着ペプチドが、ArgLysArgLeuGlnValGlnLeuSerIleArgThrである、請求項1から5の何れか1項に記載の多糖類ゲル組成物。細胞接着ペプチドが、LysAlaPheAspIleThrTyrValArgLeuLysPheである、請求項1から5の何れか1項に記載の多糖類ゲル組成物。細胞接着ペプチドが、AlaThrLeuGlnLeuGlnGluGlyArgLeuHisPheXaaAspLeuGlyLysGlyArgXaaはNleを示すである、請求項1から5の何れか1項に記載の多糖類ゲル組成物。膜状の形態である、請求項1から8の何れか1項に記載の多糖類ゲル組成物。請求項1から9の何れか1項に記載の多糖類ゲル組成物を含む、細胞培養基材。多糖類溶液に細胞接着ペプチドを混合し、得られた混合物を乾燥し、再水和する工程を含む、請求項1から9の何れか1項に記載の多糖類ゲル組成物の製造方法。細胞を請求項1から9の何れか1項に記載の多糖類ゲル組成物上で培養することを含む、細胞培養方法。細胞を請求項1から9の何れか1項に記載の多糖類ゲル組成物上で培養することを含む、神経突起伸長の誘導法。細胞を請求項1から9の何れか1項に記載の多糖類ゲル組成物上で培養することを含む、管腔様構造形成の誘導法。細胞を請求項1から9の何れか1項に記載の多糖類ゲル組成物上で培養することを含む、腺房様構造形成の誘導法。本発明は、多糖類と細胞接着ペプチドを用いて、従来より簡便な方法で製造できる多糖類ゲル組成物を提供することを解決すべき課題とする。より詳細には、本発明は、多糖類と細胞接着ペプチドとを共有結合させることなく使用することで製造できる多糖類ゲル組成物を提供することを解決すべき課題とする。本発明者らは上記課題を解決するために鋭意検討した結果、加熱したアガロースに、細胞接着ペプチドを均一に混合し、冷却によるゲル化後、乾燥、再水和するという非常に短いステップで、細胞接着性、神経突起伸長活性、管腔様構造形成活性、及び腺房様構造形成活性を有する薄いアガロースゲルが得られることを見出し、本発明を完成するに至った。即ち、本発明によれば以下の発明が提供される。1多糖類溶液に細胞接着ペプチドを混合し、乾燥、及び再水和することによって得られる多糖類ゲル組成物。2多糖類がアガロースである、1に記載の多糖類ゲル組成物。3多糖類の量が0.15~15μg/mm2である、1又は2に記載の多糖類ゲル組成物。4細胞接着ペプチドの量が3~300pmol/mm2である、1から3の何れか1項に記載の多糖類ゲル組成物。5細胞接着ペプチドが、細胞表面受容体のシンデカンに作用するペプチドである、1から4の何れか1項に記載の多糖類ゲル組成物。6細胞接着ペプチドが、ArgLysArgLeuGlnValGlnLeuSerIleArgThrである、1から5の何れか1項に記載の多糖類ゲル組成物。7細胞接着ペプチドが、LysAlaPheAspIleThrTyrValArgLeuLysPheである、1から5の何れか1項に記載の多糖類ゲル組成物。8細胞接着ペプチドが、AlaThrLeuGlnLeuGlnGluGlyArgLeuHisPheXaaAspLeuGlyLysGlyArgXaaはNleを示すである、1から5の何れか1項に記載の多糖類ゲル組成物。9膜状の形態である、1から8の何れか1項に記載の多糖類ゲル組成物。101から9の何れか1項に記載の多糖類ゲル組成物を含む、細胞培養基材。11多糖類溶液に細胞接着ペプチドを混合し、得られた混合物を乾燥し、再水和する工程を含む、1から9の何れか1項に記載の多糖類ゲル組成物の製造方法。12細胞を1から9の何れか1項に記載の多糖類ゲル組成物上で培養することを含む、細胞培養方法。13細胞を1から9の何れか1項に記載の多糖類ゲル組成物上で培養することを含む、神経突起伸長の誘導法。14細胞を1から9の何れか1項に記載の多糖類ゲル組成物上で培養することを含む、管腔様構造形成の誘導法。15細胞を1から9の何れか1項に記載の多糖類ゲル組成物上で培養することを含む、腺房様構造形成の誘導法。本発明における細胞接着性を有する多糖類ゲル組成物の製造方法は、ペプチドとアガロースを混合して乾燥、再水和するだけという極めて簡単なステップである。また、このペプチドを混合した多糖類ゲル組成物の物性は多糖類の物性と大差無く、その取り扱いは容易であった。細胞接着ペプチドを混合することにより、単独では全く細胞接着活性を有さない多糖類が高い細胞接着活性を示すようになった。さらに、本発明の多糖類ゲル組成物は、これまでペプチドを結合したキトサンまたはアルギン酸ではできなかった血管内皮細胞の管腔様構造形成や唾液腺細胞の腺房様構造形成を誘導することができた。上記の通り、本発明の多糖類ゲル組成物は、細胞接着活性、神経細胞の神経突起伸長活性だけでなく、従来の多糖類ゲルでは不可能であった血管内皮細胞の管腔様構造形成や唾液腺細胞の腺房様構造形成等を促進し、細胞特異的な高い生物活性を有するものである。従って、本発明の多糖類ゲル組成物は、細胞分化を目的として用いることもできる。以下、本発明について更に詳細に説明する。1多糖類本発明で用いる多糖類の種類は、本発明の効果が達成できる限り、特に限定はされない。多糖類の具体例としては、アガロース、デンプン、グリコーゲン、カラギーナン、ヘパリン、ヒアルロン酸、キシログルカン、ペクチン、セルロース、キチン、キトサン、アルギン酸等を挙げることができるが、これらに限定されるものではない。上記の中でもアガロースは、キトサンやアルギン酸等の多糖類と比べ、架橋剤等を必要とせずに温度の操作のみでゲル化が可能であるため、最も好ましい。アガロースには、様々な規格のものが知られ、市販もされているが、一定の条件でヒドロゲルを形成するものであれば、何れのアガロースを用いても構わない。本発明の多糖類ゲル組成物における多糖類の量は特に限定されないが、好ましくは0.15~15μg/mm2である。多糖類の量が0.15μg/mm2未満になるとゲルの強度が低下し、また、多糖類の量が15μg/mm2を超えると取り扱いが困難になり、何れも好ましくない。2細胞接着ペプチド本発明で用いる細胞接着ペプチドの種類は、本発明の効果が達成できる限り、特に限定はされない。細胞接着ペプチドとしては、細胞表面受容体のシンデカンに作用するペプチドが好ましい。特に好ましくは、ラミニンに由来するペプチド、例えば、ラミニンα1鎖又はラミニンγ1鎖に由来する細胞接着ペプチドを使用することができる。本発明で用いることができる細胞接着ペプチドの具体例としては、以下のアミノ酸配列からなるペプチドを挙げることができる。RKRLQVQLSIRTArgLysArgLeuGlnValGlnLeuSerIleArgThrKAFDITYVRLKFLysAlaPheAspIleThrTyrValArgLeuLysPheATLQLQEGRLHFXDLGKGRXNleAlaThrLeuGlnLeuGlnGluGlyArgLeuHisPheXaaAspLeuGlyLysGlyArg細胞接着ペプチドは、化学合成により製造することができる。ペプチドの化学合成は、任意の方法を用いて行うことができる。例えば、Fmoc固相合成法にてマニュアルで合成することによって、所望のペプチドを合成することができる。また、ペプチドのN-末端又はC-末端は、細胞接着活性を損なわい限り、適当な保護基等によって保護されていてもよいし、フリーのアミノ基又はカルボキシ基であってもよい。本発明の多糖類ゲル組成物における細胞接着ペプチドの量は特に限定されないが、好ましくは3~300pmol/mm2である。細胞接着ペプチドの量が3pmol/mm2未満になると細胞接着性が低下するため好ましくなく、また、細胞接着ペプチドの量が300pmol/mm2を超えても特に利点はない。3多糖類ゲル組成物の製造方法本発明においては、多糖類溶液に細胞接着ペプチドを混合し、得られた混合物を乾燥して多糖類乾燥組成物とし、再水和することによって、多糖類ゲル組成物を製造することができる。具体的には、例えば、多糖類特に好ましくはアガロースを水に加え、例えば、電子レンジを用いて加熱して多糖類を溶解させる。溶解した状態の多糖類特に好ましくはアガロースを、例えば、50°Cぐらいまで冷却してから、細胞接着ペプチドを加えて均一な混合物とすることができる。この混合物を、例えば、プラスチックプレート等の容器に注ぎ、ヒドロゲルを得た後、例えば、室温で24時間以上乾燥して多糖類乾燥組成物とし、該多糖類乾燥組成物に水を添加してヒドロゲル化することによって、細胞接着ペプチドを含む本発明の多糖類ゲル組成物を製造することができる。なお、本発明の多糖類ゲル組成物の形態は特に限定されず、膜状、粒子状、筒状等任意の形態で用いることができる。4多糖類ゲル組成物を用いた細胞培養上記した本発明の多糖類ゲル組成物は、細胞培養基材として使用することができる。本発明の多糖類ゲル組成物を用いて細胞培養を行うには、例えば、その多糖類ゲル組成物の上で、通常の細胞培養に準じた操作を行えばよい。本発明の多糖類ゲル組成物を用いて細胞培養を行うことによって、神経突起伸長能を誘導したり、管腔様構造形成能を誘導したり、腺房様構造形成を誘導することができる。以下の実施例により本発明をさらに詳細に説明するが、本発明は、以下の実施例によって限定されるものではない。実施例中では次の略号を用いる。PBSphosphatebufferedsalinewithoutCa2andMg2EDTAethylenediaminetetraaceticacidTrypsinEDTA005Trypsinin53mMEDTA4NaFBSfetalbovineserumHShorseserumNGFnervegrowthfactorBSAbovineserumalbuminDMEMdulbeccosmodifiedeaglesmediumDMEMF12dulbeccosmodifiedeaglesmediumnutrientmixtureF12hamMilliQultrapurewaterHDFhumandermalfibroblastPC12ratpheochromocytomacelllineSVECsmallvesselendothelialcellHSGhumansubmandibularglandAG73RKRLQVQLSIRTmouselamininα1chainC16KAFDITYVRLKFmouselamininγ1chainEF1zzATLQLQEGRLHFXDLGKGRXNlemouselamininα1chain[細胞接着ペプチドを混合した膜状のアガロースの作製]粉末のアガロースをMilliQ水に加え、電子レンジ等で加熱して溶解させる。溶解したアガロースをゲル化する手前の50°Cぐらいまで冷まし、ペプチドを加える000202mM。アガロースを96wellプレートに50μlずつ加え、室温で24時間以上乾燥させ、再水和し、アガロース:015~15μgmm2、ペプチド:3~300pmolmm2のアガロースゲルを作製した。[細胞接着の観察]HDFは10FBS、100unitsmlペニシリン及び100μgmlストレプトマイシンを含むDMEMを用い、37°C、5CO2雰囲気下で培養した。HDFをPBSで洗浄し、TrypsinEDTAを加え,培養ディッシュから剥離した。剥離したHDFを10FBS、100unitsmlペニシリン及び100μgmlストレプトマイシン含有DMEMに懸濁させ、37°C、5CO2雰囲気下20分間のインキュベートでリカバリーした後、01BSADMEMで3回洗浄した。HDFを01BSADMEMに懸濁し、AG73、C16、EF1zzを含んだアガロースゲルアガロース:015~15μgmm2、ペプチド:3~300pmolmm2をコートした各wellに100μlずつ2×104cellswell加えて37°C、5CO2雰囲気下にて2時間インキュベートした。2時間後、02クリスタルバイオレット20メタノール水溶液で15分間染色し、MilliQ水で3回洗浄後1晩乾燥させた。HDFは顕微鏡KeyenceBZ8000下で観察した。その結果、AG73、C16、EF1zzを含むアガロースゲルは上記の範囲のアガロース量、ペプチド量において細胞接着活性を有することがわかった図1。[神経突起伸長の観察]PC12は75FBS、75HS、100unitsmlペニシリン及び100μgmlストレプトマイシンを含むHighglucoseDMEMを用い、37°C、5CO2雰囲気下で培養した。アッセイの24時間前にNGF100ngmlで刺激したPC12細胞をPBSで洗浄し、ピペッティングにより培養ディッシュより剥離した。PC12細胞を75FBS、75HS、100unitsmlペニシリン及び100μgmlストレプトマイシンを含むDMEMに懸濁し、37°C、5CO2雰囲気下で30分間のインキュベートでリカバリーした後、30nMNaSeO3含有DMEMF12で3回洗浄した。さらにPC12細胞を100μgmlトランスフェリン、20nMプロゲステロン、5μgmlインシュリン、100ngmlNGF及び30nMNaSeO3含有DMEMF12に再懸濁し、AG73、C16、EF1zzを含むアガロースゲルアガロース:01515μgmm2、ペプチド:150pmolmm2をコートした各wellに100μlずつ3×103cellswell加えて37°C、5CO2雰囲気下で24時間インキュベートした。その後、予め37°Cに温めておいた20ホルマリンで10分間固定し、02クリスタルバイオレット20メタノール水溶液で染色した。MilliQ水で3回洗浄した後、1晩乾燥させた。PC12細胞は顕微鏡KeyenceBZ8000下で観察した。その結果、AG73を含むアガロースゲルは上記の範囲のアガロース量、AG73量において神経突起伸長活性を有することがわかった図2。[血管内皮細胞の管腔様構造の形成の観察]SVECは10FBS、100unitsmlペニシリン及び100μgmlストレプトマイシンを含むDMEMを用い、37°C、5CO2雰囲気下で培養した。SVECをPBSで洗浄し、TrypsinEDTAを加え,培養ディッシュから剥離した。剥離したSVECを10FBS、100unitsmlペニシリン及び100μgmlストレプトマイシン含有DMEMに懸濁させ、37°C、5CO2雰囲気下で20分間のインキュベートでリカバリーした後、01BSADMEMで3回洗浄した。SVECを01BSADMEMに懸濁し、AG73、C16、EF1zzを含むアガロースゲルアガロース:01515μgmm2、ペプチド:3300pmolmm2をコートした各wellに100μlずつ5×104cellswell加えて37°C、5CO2雰囲気下にて24時間インキュベートした。24時間後、02クリスタルバイオレット20メタノール水溶液で15分間染色し、MilliQ水で3回洗浄後1晩乾燥させた。SVECは顕微鏡KeyenceBZ8000下で観察した。その結果、AG73を含むアガロースゲルはいくつかの条件で管腔様構造を形成した。特に、アガロース:75μgmm2、AG73:75pmolmm2の条件が最もネットワークの形が鮮明な管腔様構造を形成した図3。[唾液腺細胞の腺房様構造の形成の観察]HSG細胞は5FBS、100unitsmlペニシリン及び100μgmlストレプトマイシンを含むDMEMF12を用い、37°C、5CO2雰囲気下で培養した。HSG細胞をPBSで洗浄し、TrypsinEDTAを加え,培養ディッシュから剥離した。剥離したHSG細胞を5FBS、100unitsmlペニシリン及び100μgmlストレプトマイシン含有DMEMF12に懸濁させ、37°C、5CO2雰囲気下で20分間のインキュベートでリカバリーした後、01BSADMEMで3回洗浄した。HSG細胞を01BSADMEMに懸濁し、AG73を含むアガロースゲルアガロース:15μgmm2、AG73:300pmolmm2をコートした各wellに150μlずつ3×104cellswell加えて37°C、5CO2雰囲気下にて72時間インキュベートした。72時間後、HSG細胞を顕微鏡KeyenceBZ8000下で観察した。その結果、HSG細胞はAG73を含むアガロースゲル上で複数の細胞が集合した腺房様の構造を形成した図4。"