"生体から分離した被検試料中のOATP1B3OrganicAnionTransportingPolypeptide1B3mRNAの選択的スプライシングバリアントの測定方法であって、前記被検試料中の、配列番号:1で表される塩基配列を含むmRNAを、配列番号:2で表される塩基配列を含むmRNAと識別して測定することを含む、測定方法。配列番号:1で表される塩基配列におけるエキソンSVの存在を指標として、配列番号:1で表される塩基配列を含むmRNAを測定する、請求項1に記載の測定方法。前記エキソンSVを含む領域に設定したプライマーを一方のプライマーとして用いる核酸増幅法により、配列表の配列番号:1で表される塩基配列を含むmRNAまたはそのcDNAの部分領域を特異的に増幅し、増幅産物を測定することを含む、請求項2に記載の測定方法。前記プライマーの塩基数が15~35である、請求項3に記載の測定方法。前記核酸増幅法がRT-PCR法である、請求項3または4に記載の測定方法。以下の条件を満足する核酸:1配列番号:1で表される塩基配列を含む核酸とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする;2配列番号:2で表される塩基配列を含む核酸が共存する場合に、ストリンジェントな条件下で、当該核酸とハイブリダイズしないか、または、当該核酸とハイブリダイズした場合であってもその3’末端がミスマッチとなる。配列番号:1で表される塩基配列におけるエキソンSVを含む領域とハイブリダイズする、請求項6に記載の核酸。塩基数が10以上である、請求項6または7に記載の核酸。塩基数が15~35である、請求項8に記載の核酸。配列番号:1で表される塩基配列または当該塩基配列の部分領域と同じ塩基配列またはこれらの塩基配列のうち10以下の塩基が置換されてなる塩基配列からなる、請求項6~9のいずれか1項に記載の核酸。OATP1B3mRNAの選択的スプライシングバリアントの測定に用いられる、請求項6~10のいずれか1項に記載の核酸。核酸増幅用のプライマー、またはプローブである、請求項11に記載の核酸。請求項11または12に記載の核酸を含む、OATP1B3mRNAの選択的スプライシングバリアントの測定用キット。請求項1~5のいずれか1項に記載の測定方法により、または、請求項13に記載の測定用キットを用いて、生体から分離した被検試料中のOATP1B3mRNAの選択的スプライシングバリアントを測定することを含む、がんの検出方法。配列番号:1で表される塩基配列を含むOATP1B3mRNAの選択的スプライシングバリアントを測定する、請求項14に記載の検出方法。前記がんが大腸がんまたは膵臓がんである、請求項14または15に記載の検出方法。請求項1~5のいずれか1項に記載の測定方法により、または、請求項13に記載の測定用キットを用いて、がん細胞を被検物質の存在下で培養して得られる培養細胞中のOATP1B3mRNAの選択的スプライシングバリアントを測定する工程と、得られた測定結果を、前記被検物質の非存在下における場合と比較および/または評価する工程と、を含む、がんの予防および/または治療剤のスクリーニング方法。配列番号:1で表される塩基配列を含む、OATP1B3OrganicAnionTransportingPolypeptide1B3mRNAの選択的スプライシングバリアント。1配列番号:5、配列番号:7、配列番号:9、または配列番号:11で表されるアミノ酸配列を含み、かつ、がん細胞またはがん組織において発現が増強するポリペプチド、あるいは、2配列番号:5、配列番号:7、配列番号:9、または配列番号:11で表されるアミノ酸配列において、10以下のアミノ酸が置換、欠失、および/または挿入されたアミノ酸配列を含み、かつ、がん細胞またはがん組織において発現が増強するポリペプチド。配列番号:5、配列番号:7、配列番号:9、または配列番号:11で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド。請求項19または20に記載のポリペプチドをコードする核酸。請求項21に記載の核酸を含む発現ベクター。請求項22に記載の発現ベクターで形質転換された細胞。請求項19または20に記載のポリペプチドに結合する抗体。配列番号4、配列番号6、配列番号8、または配列番号10で表される塩基配列を含む核酸とストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、少なくとも15塩基を有する核酸。生体から分離した被検試料中の、請求項19または20に記載のポリペプチドの量を測定することを含む、がんの検出方法。請求項24に記載の抗体を測定に用いる、請求項26に記載の検出方法。請求項24に記載の抗体を含む、がんの検出用キット。請求項19または20に記載のポリペプチドもしくはその断片、または、請求項21に記載の核酸もしくはその断片を含む、特異的な細胞傷害性T細胞を誘導するための医薬。がんワクチンである、請求項29に記載の医薬。上述したような従来技術に鑑み、本発明は、新規ながんマーカーおよびその用途を提供することを目的とする。より詳細には、本発明は、新規ながんマーカー、当該がんマーカーの測定方法および測定用キット、これを用いたがんの検出方法、がんの検出用キット、がんの予防および/または治療剤のスクリーニング方法、並びに、がんワクチン等の医薬を提供することを目的とする。本発明者らは、上述した従来技術に鑑み、OATP1B3の発現機能のさらなる探索を目的として、鋭意研究をおこなった。その過程で、驚くべきことに:1従来報告されているOATP1B3mRNA本明細書中、OATP1B3/wtとも称する;wtとは野生型WildTypeの意であるの選択的スプライシングバリアントが存在すること、2この新たな選択的スプライシングバリアントが、がん細胞組織において特異的に強く発現すること;および、3この新たな選択的スプライシングバリアントから、いくつかのペプチドまたはタンパク質が発現しうること、の3つの知見を得て本明細書中、この選択的スプライシングバリアントをOATP1B3/ctとも称する;ctとはがん型CancerTypeの意である、これらの知見に基づき、本発明を完成させるに至った。すなわち、本発明の第1の形態によれば、被検試料中のOATP1B3mRNAの選択的スプライシングバリアントの測定方法が提供される。当該測定方法は、生体から分離した被検試料中の、配列表の配列番号:1で表される塩基配列を含むmRNAを、配列番号:2で表される塩基配列を含むmRNAと識別して測定することを含む。この際、OATP1B3/ctは、配列番号:1で表される塩基配列におけるエキソンSVの存在を指標として測定されることが好ましいエキソンSVについての詳細は後述する。また、この測定は、例えば、エキソンSVを含む領域に設定したプライマーを一方のプライマーとして用いる核酸増幅法により、OATP1B3/ctまたはそのcDNAの部分領域を特異的に増幅し、増幅産物を測定することを含む。なお、前記プライマーの塩基数は、好ましくは15~35程度である。また、前記核酸増幅法は、好ましくはRT-PCR法である。また、本発明の第2の形態によれば、以下の条件を満足する核酸を提供する:1配列番号:1で表される塩基配列を含む核酸とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする;2配列番号:2で表される塩基配列を含む核酸が共存する場合に、ストリンジェントな条件下で、当該核酸とはハイブリダイズしないか、または、当該核酸とハイブリダイズした場合であってもその3’末端がミスマッチとなる。この際、当該核酸は、エキソンSVを含む領域とハイブリダイズすることが好ましい。また、当該核酸の塩基数は、好ましくは10程度以上であり、より好ましくは15~35程度である。さらに、当該核酸は、配列番号:1で表される塩基配列または当該塩基配列の部分領域と同じ塩基配列またはこれらの塩基配列のうち10以下の塩基が置換されてなる塩基配列からなることが好ましい。当該核酸は、OATP1B3mRNAの選択的スプライシングバリアントの測定に好適に用いられる。この際、当該核酸は、好ましくは核酸増幅用のプライマー、またはプローブである。さらに、本発明の第3の形態によれば、本発明の第2の形態により提供される核酸を含む、OATP1B3mRNAの選択的スプライシングバリアントの測定用キットが提供される。また、本発明の第4の形態によれば、がんの検出方法も提供される。当該検出方法は、本発明の第1の形態により提供される測定方法により、または、本発明の第3の形態により提供される測定用キットを用いて、生体から分離した被検試料中のOATP1B3mRNAの選択的スプライシングバリアントを測定することを含む。この際、配列番号:1で表される塩基配列を含むOATP1B3mRNAの選択的スプライシングバリアントを測定することが好ましい。また、当該検出方法において、がんは、大腸がんまたは膵臓がんであることが好ましい。さらに、本発明の第5の形態によれば、がんの予防および/または治療剤のスクリーニング方法もまた、提供される。当該スクリーニング方法は、本発明の第1の形態により提供される測定方法により、または、本発明の第3の形態により提供される測定用キットを用いて、がん細胞を被検物質の存在下で培養して得られる培養細胞中のOATP1B3mRNAの選択的スプライシングバリアントを測定する工程と、得られた測定結果を、前記被検物質の非存在下における場合と比較および/または評価する工程とを含む。そして、本発明の第6の形態によれば、配列番号:1で表される塩基配列を含む、OATP1B3mRNAの選択的スプライシングバリアント自体もまた、提供される。本選択的スプライシングバリアントは、例えば、該バリアントを培養細胞等に導入し強制発現させることにより、がん化培養細胞等を作成し、本発明の第5の形態のスクリーニング方法にも利用できる。また、本発明の第7の形態によれば、1配列番号:5、配列番号:7、配列番号:9、または配列番号:11で表されるアミノ酸配列を含み、かつ、がん細胞またはがん組織において発現が増強するポリペプチド、あるいは、2配列番号:5、配列番号:7、配列番号:9、または配列番号:11で表されるアミノ酸配列において、10以下のアミノ酸が置換、欠失、および/または挿入されたアミノ酸配列を含み、かつ、がん細胞またはがん組織において発現が増強するポリペプチドが提供される。当該ポリペプチドは、好ましくは、配列番号:5、配列番号:7、配列番号:9、または配列番号:11で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチドである。さらに、本発明の第8の形態によれば、第7の形態のポリペプチドをコードする核酸や、当該核酸を含む発現ベクター、当該発現ベクターで形質転換された細胞もまた、提供される。また、本発明の第9の形態によれば、第7の形態のポリペプチドに結合する抗体や、配列番号:4、配列番号:6、配列番号:8、または配列番号:10で表される塩基配列を含む核酸とストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、少なくとも15塩基を有する核酸もまた、提供される。そして、本発明の第10の形態によれば、生体から分離した被検試料中の、上記第7の形態のポリペプチドの量を測定することを含む、がんの検出方法が提供される。この際、上記第9の形態の抗体を測定に用いることが好ましい。また、当該抗体を含む、がんの検出用キットも提供されうる。本発明の第11の形態では、医薬が提供される。当該医薬は、第7の形態のポリペプチドまたはその断片や、第8の形態の核酸またはその断片を含み、特異的な細胞傷害性T細胞を誘導するためのものである。当該医薬は、好ましくはがんワクチンである。本発明によれば、新規ながんマーカーとしてヒトOATP1B3mRNAの新規な選択的スプライシングバリアントが提供され、その測定方法、当該測定に利用可能な核酸、および当該測定方法を実施するための手段測定用キットが提供される。また、本発明によれば、新規ながんの検出方法も提供され、さらには、がんの予防および/または治療剤の新規なスクリーニング方法も提供される。そして、がんの検出に用いられうるポリペプチドやこれに結合する抗体、当該ポリペプチドの量を指標としたがんの検出方法、当該抗体を含むがんの検出用キット、がんワクチン等としての医薬などもまた、提供される。ヒトSLCO1B3遺伝子は、染色体12p12上に位置する約106kbpの遺伝子であり、この遺伝子から、2712bp15エキソンからなるOATP1B3mRNAOATP1B3/wt;RefseqAccessionNo.NM_019844が転写される。既に報告されているこのOATP1B3/wtのcDNAの塩基配列を配列番号:2および図1に示す。このOATP1B3/wtは、702アミノ酸からなるタンパク質OATP1B3タンパク質;RefSeqAccessionNo.NP_062818をコードしている。このOATP1B3/wtによりコードされるタンパク質のアミノ酸配列を配列番号:3および図2に示す。なお、配列番号:2で表される塩基配列において、5’末端から1番目の塩基本明細書中、1ntのように称する。他の位置の塩基も同様に5’末端から何番目に位置するかの数字にntを付けて称するから61ntまでがエキソン1、62nt~210ntがエキソン2、211nt~1991ntがエキソン3~エキソン14であり、1992nt~2712ntがエキソン15である。なお、OATP1B3/wtのコード領域CDS;CodingSequenceは、エキソン2~エキソン15に跨る127~2235nt終止コドンTAAを含むであり、図1において大文字で表記されている。一方、OATP1B3/wtの非コード領域は、図1において小文字で表記されている。後述する実施例に記載するように、本発明者らは、ヒトSLCO1B3遺伝子の転写開始点を決定する目的で、ヒト大腸がん組織由来のtotalRNAをテンプレートとしてRLM-5’-RACE法をおこなったところ、既に報告されている転写開始点図1に示すTSSの情報から予想されるサイズよりも分子量の小さい増幅産物が検出されることを見出した。そして、SLCO1B3遺伝子の新規転写開始点付近の塩基配列をヒトゲノムDNAのデータベースと照合したところ、新規転写開始点はSLCO1B3遺伝子のイントロン2の領域内に存在し、さらにここに新たなエキソンが存在することが明らかとなったこの新たなエキソンをエキソンSVと称する。また、このエキソンSVはOATP1B3/wtでいうエキソン3へとスプライシングされていた後述する図4を参照。このようにして発見されたOATP1B3mRNAの新規な選択的スプライシングバリアントOATP1B3/ctのcDNAの塩基配列を配列番号:1および図1に示す。上述したように、OATP1B3/ctのエキソンSVはOATP1B3/wtのエキソン3へとスプライシングされていた。すなわち、配列番号:1で表される塩基配列において、1nt~139ntがエキソンSVである。また、配列番号:1で表される塩基配列における140nt~1920ntは、OATP1B3/wtのエキソン3~エキソン14と実質的に同一の塩基配列を有する。そして、配列番号:1で表される塩基配列における1921nt~2170ntは、OATP1B3/wtのエキソン15の対応部分と同一の塩基配列を有する。本発明において見出された選択的スプライシングバリアント例えば、OATP1B3/ctは、後述する実施例に記載のように、がん細胞においてその発現量が増大していることが確認された。したがって、生体から分離した被検試料中の当該選択的スプライシングバリアントを測定することにより、がんの検出が可能である。以下、本発明の具体的な好ましい実施形態についてより詳細に説明するが、本発明の技術的範囲は特許請求の範囲の記載に基づいて定められるべきであり、以下の具体的な実施形態や実施例によって限定されるべきではない。本発明の第1の形態により提供されるOATP1B3mRNAの選択的スプライシングバリアントの測定方法では、生体から分離した被検試料中の、配列番号:1で表される塩基配列を含むmRNA例えば、配列番号:1で表される塩基配列からなるmRNAを、配列番号:2で表される塩基配列を含むmRNA例えば、配列番号:2で表される塩基配列からなるmRNAと識別して測定することを含む。なお、配列番号:1の塩基配列は、mRNAおよびこれをテンプレートとして得られるcDNAの塩基配列を兼用して示すものであり、mRNAを示す場合には、当然ながら、チミンtに代えてウラシルuが含まれるため、tをuに読み替える。また、測定には、定量、半定量および検出のいずれの概念も包含される。さらに、mRNAを測定することには、mRNAを直接的に測定する場合のほか、mRNAを一旦cDNAへと変換した後に当該cDNAを測定する場合後述するRT-PCR等や、mRNAの翻訳産物を測定する場合のように、mRNAを間接的に測定する場合も包含される。また、以下の説明では、配列番号:1で表される塩基配列を含むmRNA、cDNA、核酸等を、配列番号:1のmRNA、cDNA、核酸等と称することがある。なお、配列表には、規則により、二本鎖核酸であってもそのうちの一本鎖ポリペプチドをコードする核酸ではセンス鎖のみを記載することになっている。このため、二本鎖核酸の場合には、配列表に現実に記載されている配列は一本鎖であっても、実際にはその相補鎖も配列表に記載されていると解することができる。したがって、本願明細書においても、ある配列番号で表される塩基配列を含むもしくはこれからなる核酸が二本鎖核酸である場合または二本鎖核酸であってもよい場合には、その配列番号で表される塩基配列は、文脈上そうでないことが明らかな場合を除き、その相補鎖をも包含するものとする。例えば、配列番号:1で表される塩基配列を含む核酸とハイブリダイズする核酸とは、配列番号:1に現実に記載されているセンス鎖にハイブリダイズする核酸のほか、当該センス鎖に相補的な塩基配列からなるアンチセンス鎖にハイブリダイズする核酸をも意味するのである。配列番号:1のmRNAを配列番号:2のmRNAと識別して測定することは、当業者にとって容易であり、種々の方法により可能である。例えば、エキソンSV内とエキソン3以降の領域にプライマーを設定して逆転写PCRRT-PCRをおこない、増幅産物の分子量に基づいて、そのmRNAがOATP1B3/wtか選択的スプライシングバリアント例えば、OATP1B3/ctかを識別してmRNAを測定することができる。また、得られた増幅産物について塩基配列を決定してもよいダイレクトシークエンス。配列番号:1のmRNAには、上述したように、OATP1B3/wtには存在しないエキソンであるエキソンSVが存在する。このため、このエキソンSVの存在を指標として選択的スプライシングバリアントを測定することができる。すなわち、配列番号:1で表される塩基配列におけるエキソンSVの存在を指標として、配列番号:1で表される塩基配列を含む選択的スプライシングバリアントを測定することができる。エキソンSVの存在を指標として選択的スプライシングバリアントを測定する好ましい方法としては、エキソンSVを含む領域にハイブリダイズするプライマーを用いた核酸増幅法を用いる方法や、エキソンSVを含む領域にハイブリダイズするプローブを用いる方法を挙げることができる。核酸増幅法を用いる方法には、エキソンSVを含む領域に設定したプライマーを一方のプライマーとして用いる核酸増幅法により配列番号:1で表される塩基配列を含むmRNAまたはそのcDNAの部分領域を特異的に増幅し、増幅産物を測定することを含む。ここで、領域に設定したとは、その領域とハイブリダイズするという意味であり、また、PCRのような核酸増幅法により増幅される核酸は二本鎖であるから、上述したように、配列表に現実に記載されているセンス鎖にハイブリダイズするプライマーリバース側プライマーを用いる場合と、当該センス鎖に相補的なアンチセンス鎖にハイブリダイズするプライマーフォワード側プライマーを用いる場合の両者が包含される。したがって、例えば、エキソンSVを含む領域に設定したプライマーとは、配列番号:1に現実に記載されたセンス鎖のエキソンSVを含む領域つまり、1nt~139ntにハイブリダイズするプライマーリバース側プライマーまたは当該プライマーに相補的な塩基配列を有するプライマーフォワード側プライマーを意味する。また、特異的に増幅するとは、配列番号:1で表される塩基配列を含むmRNAまたはそのcDNAの部分領域は増幅されるが、配列番号:2で表される塩基配列を含むmRNAまたはそのcDNAの部分領域は増幅されないことを意味する。なお、配列番号:1で表される塩基配列において、1nt~139ntがエキソンSVであり、エキソン3は140ntから始まる。したがって、配列番号:1で表される塩基配列において、139ntと140ntとの融合点は、OATP1B3/wtには存在しないエキソンSVとエキソン3との特異的融合点である。ただし、図1からも明らかなように、上記特異的融合点の上流側2塩基は、OATP1B3/wtとOATP1B3/ctとで共通している。したがって、配列番号:1で表される塩基配列における139ntと140ntとの融合点よりも、これに最も近接した他の特異的融合点である137ntと138ntとの融合点が、エキソンSVとエキソン3との特異的融合点としてより適切である。このことから、本明細書において、エキソンSVを含む領域としては、1nt~137ntがより好ましい。テンプレートとなるmRNAの部分領域と同じ塩基配列ただしuはtになるを有するDNAを増幅する核酸増幅法の好ましい例として、逆転写PCRRT-PCRが挙げられる。RT-PCRでは、細胞からmRNAを常法により抽出し、逆転写酵素の作用によりmRNAをテンプレートとして第一鎖cDNAを生成させ、さらにこの第一鎖cDNAをテンプレートとして相補鎖を生成させて、二本鎖cDNAを得る。次いで、得られた二本鎖cDNAをテンプレートとしてPCRをおこない、該cDNAまたはその部分領域を増幅する。RT-PCR自体は周知の技術であり、そのためのキットや装置も市販されているため、容易に実施することができる。選択的スプライシングバリアント由来のcDNAを特異的に増幅するために、上述した特異的融合点を含む領域に設定したプライマーを一方のプライマーとして用いる。他方のプライマーは、増幅すべきスプライシングバリアントの任意の領域に設定することができる。なお、プライマーのサイズは特に限定されないが、通常15~35塩基程度であり、好ましくは15~25塩基程度である。例えば、配列番号:1のmRNAをRT-PCRにより測定する場合、配列番号:1で表される塩基配列中のエクソンSVを含む領域に設定したプライマーを一方のプライマーフォワード側プライマーでもリバース側プライマーでもよいとして用いる。ここで、選択的スプライシングバリアント由来のcDNAを特異的に増幅するためには、プライマーとして、ストリンジェントな条件下で、配列番号:1のcDNAにはハイブリダイズするが、配列番号:2のcDNAにはハイブリダイズしないものを用いることが好ましい。ここでストリンジェントな条件とは、プライマーがcDNAに対して特異的にハイブリダイゼーションする条件をいい、例えば成書に記載の条件サムブルックSambrookら編、モレキュラークローニング,アラボラトリーマニュアル第2版、1989年、コールドスプリングハーバーラボラトリー、特に11.45節ConditionsforHybridizationofOligonucleotideprobes等にしたがって決定でき、特に制限されない。ストリンジェントな条件は、塩濃度、温度、およびその他の条件によって決まり、例えば、塩濃度が低いほど、温度が高いほど、ストリンジェンシーは高くなり、プライマーとcDNAとがハイブリダイゼーションしにくくなる。塩濃度は、一般に、SSC溶液NaClクエン酸三ナトリウムの濃度を調節することによって調節され、ストリンジェントな塩濃度は、例えば、NaCl約250mM以下およびクエン酸三ナトリウム約25mM以下である。ストリンジェントな温度は、一般に、完全ハイブリッドの融解温度Tmより15~25°C低い温度であり、例えば、約30°C以上である。溶液に有機溶媒例えばホルムアミドを加えることにより、温度を下げることができる。その他の条件としては、ハイブリダイゼーション時間、洗浄剤例えば、SDSの濃度、およびキャリアーDNAの存否等であり、これらの条件を組み合わせることによって、様々なストリンジェンシーを設定することができる。好ましい例として、250mMNaCl、25mMクエン酸三ナトリウム、1SDS、50ホルムアミド、200μg/mLの変性サケ精子DNAの条件で、42°Cの温度によりハイブリダイゼーションをおこなう。また、ハイブリダイゼーション後の洗浄の条件もストリンジェンシーに影響する。この洗浄条件もまた、塩濃度および温度によって定義され、塩濃度の減少と温度の上昇によって洗浄のストリンジェンシーは増加する。好ましい例として、15mMNaCl、1.5mMクエン酸三ナトリウムおよび0.1SDSの条件で、68°Cの温度にて洗浄をおこなう。配列番号:1のcDNAにはハイブリダイズするが、配列番号:2のcDNAにはハイブリダイズしないことを確保するために、ストリンジェントな条件下で、プライマーの20以上がエキソンSVを含む領域とハイブリダイズするものであることが好ましい。あるいは、ストリンジェントな条件下でも配列番号:2のcDNAとハイブリダイズした場合には、プライマーの3’末端がミスマッチとなるプライマーを用いることが好ましい。たとえストリンジェントな条件下で配列番号:2のcDNAとハイブリダイズしても、プライマーの3’末端がミスマッチであれば増幅は実質的に起きない。さらには、その少なくとも20以上がエキソンSV内の領域とストリンジェントな条件下でハイブリダイズするものであって、かつ、その3’末端が配列番号:2のcDNAとはミスマッチになるプライマーを用いることが特に好ましい。以上のようなプライマーを一方のプライマーとして用いることにより、配列番号:2のcDNAの共存下であっても、配列番号:1のcDNAのみを特異的に増幅することができる。なお、プライマーとしては、プライマーがハイブリダイズする配列番号:1の塩基配列中の領域と完全に相補的なものが好ましいが、通常、10以下程度のミスマッチがあってもプライマーとして利用できる場合が多いただし、上述したようにプライマーの3’末端がミスマッチとなるものは除く。PCR自体は常法に従っておこなうことができる。そして、PCRによる増幅後に、増幅産物を測定する。かような増幅産物の測定も、常法によりおこなうことができる。上述したように、本発明における測定には、検出および定量の両者が包含される。さらに、増幅産物の電気泳動バンドの蛍光強度測定や、太さの目視判定のような、簡易定量または半定量も測定の概念に包含される。増幅産物の測定は、例えば増幅産物を電気泳動にかけ、増幅バンドを検出することによりおこなうことができる。また、蛍光標識したヌクレオチド三リン酸の存在下にPCRをおこなうことによって増幅産物を蛍光標識し、増幅バンドの蛍光強度を測定することによっても、増幅産物の測定をおこなうことができる。さらに、電気泳動パターンをナイロンやニトロセルロースからなるメンブレンに転写し、増幅産物にハイブリダイズする標識プローブをハイブリダイズさせて、標識を検出または定量するPCR-サザンSouthern法によってもおこなうことができる。さらには、増幅産物にハイブリダイズするプローブを固相化し、上記増幅工程を標識ヌクレオチド三リン酸の存在下におこない、固相化プローブに増幅産物を結合させ、固相に結合された増幅産物を測定することによってもおこなうことができる。これらはいずれも常法であり、周知の知見が適宜参照されうる。あるいは、上述したRT-PCRのPCRを、リアルタイム検出PCRによりおこなうと、より正確に増幅産物を定量することができるため、好ましい。リアルタイム検出PCRでは、通常のPCRを、増幅産物にハイブリダイズする2種類の蛍光色素を結合したプローブの存在下でおこなう。2種類の蛍光色素の一方は、他方の蛍光色素からの蛍光発光を打ち消すクエンチャー色素であり、2種類の蛍光色素が同一のプローブ分子に結合されている状態では蛍光は測定されない。これに対し、PCRにより増幅が起きると、まず、プローブが増幅産物にハイブリダイズする。そして、増幅に用いられるDNAポリメラーゼのエキソヌクレアーゼ活性によりプローブが消化されて2種類の蛍光色素がバラバラになると、クエンチャー色素による消光が起きないので蛍光が測定されるようになるのである。測定される蛍光強度が急激に大きくなるサイクル数が、試料中の核酸テンプレートの濃度に依存して変化することから、連続的に反応溶液の蛍光を測定することにより試料中の鋳型核酸の濃度を定量することができる。なお、リアルタイム検出PCR自体は周知の技術であり、そのためのキットも市販されているため、この市販のキットを用いて容易に実施することができる。なお、RT-PCRをおこなう場合、最初のmRNAの抽出時に混入するゲノムDNAに含まれる偽遺伝子を鋳型とする増幅が起きる場合がある。従って、用いるプライマーセットは、このような偽遺伝子に起因する増幅が起きないプライマーを選択したセットであることが好ましい。偽遺伝子に起因する増幅が起きるか否かは、例えば、そのプライマーセットを用い、ゲノムDNAをテンプレートとしてPCRをおこなった場合に、cDNAを鋳型としてPCRをおこなった場合と同じサイズの増幅産物のみが生成するか否かにより判定することができる。後述する実施例で具体的に用いられているプライマーセット表3は、このような偽遺伝子による増幅が起きないものである。また、場合によっては、RT-PCRをおこなう前に、用いる予定のRNAをテンプレートとして、ヒトグリセルアルデヒド-3-デヒドロゲナーゼGAPDHなどのハウスキーピング遺伝子を増幅するプライマーセット例えば、表1に記載のものを用いたPCRをおこない、増幅産物が得られないことを確認することによっても、ゲノムDNAの混入がないことが保証されうる。以上、本発明の測定方法をRT-PCR法によりおこなう場合を例に挙げて詳細に説明したが、本発明の測定方法は、上述したプライマーを用いて選択的スプライシングバリアントのmRNAもしくはcDNAまたはその部分領域の増幅をおこなう方法であれば、RT-PCR法によりおこなわれるものに限定されず、他のいずれの核酸増幅法を利用するものであってもよい。例えば、NASBA法3SR法、TMA法によりmRNAを増幅することもできる。NASBA法では、リバース側プライマーの5’末端にT7プロモーター配列を付加したものをリバース側プライマーとして、AMT-RT等の逆転写酵素の存在下で、mRNAをテンプレートとしてcDNA鎖アンチセンス鎖を形成する。得られたRNA/DNA二本鎖ハイブリッドのRNA鎖をRNaseHにより分解して一本鎖cDNAアンチセンス鎖とする。次に、この一本鎖cDNAをテンプレートとし、フォワード側プライマーを用いてDNAポリメラーゼ逆転写酵素としてAMT-RTを用いる場合には、AMT-RTがDNAポリメラーゼ活性を有するため、これで兼用するの存在下で相補鎖を形成して、二本鎖cDNAとする。この二本鎖cDNAは、T7プロモーター配列を含んでいることから、これにT7RNAポリメラーゼを作用させると、転写によりRNAアンチセンス鎖が次々に形成される。さらに、形成された二本鎖cDNAについて、変性工程、上記フォワード側プライマー及びリバース側プライマーとのアニーリング工程、相補鎖の伸長工程を繰り返すことにより、二本鎖cDNAが増幅され、これを鋳型とした転写によってさらにRNAアンチセンス鎖が形成される。このようなNASBA法においても、一方のプライマーとして、上記したプライマーを用いることにより、選択的スプライシングバリアントのみを増幅することができるただし、生成物は上記の通りアンチセンス鎖である。なお、NASBA法自体は周知の技術であり、このためのキットも市販されているため、この市販のキットを用いて容易に実施することができる。エキソンSVの存在を指標として選択的スプライシングバリアントを測定する他の好ましい方法としては、このエキソンSVを含む領域にストリンジェントな条件下でハイブリダイズするプローブを用いる方法があるinsituハイブリダイゼーション法。プローブとしては、ストリンジェントな条件下で、配列番号:1で表される塩基配列を有する核酸中のエキソンSVの領域にハイブリダイズするが、配列番号:2で表される塩基配列を有する核酸にはハイブリダイズしないものが用いられる。このような特異性を確保するために、プローブの全長の20~80、より好ましくは40~60がエキソンSV領域にストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、残りが隣接するエキソン3領域にストリンジェントな条件下でハイブリダイズするものであることが好ましい。プローブのサイズは、特に限定されないが、オリゴヌクレオチドの場合、通常、10塩基~全長であり、10塩基~100塩基程度が好ましく、さらに好ましくは15塩基~35塩基程度であり、cRNAやcDNAの場合、通常、300塩基~800塩基程度である。また、プライマーの場合と同様、プローブがハイブリダイズする領域と完全に同一の塩基配列を有することが最も好ましいが、プローブ全長の10以下の塩基が置換していてもよい。プローブは、上記核酸に蛍光標識、ビオチン標識、放射標識、酵素標識等の周知の標識を結合して標識プローブとすることもできる。また、プローブは、例えば固相化プローブとして用いる場合に、固相に結合させる領域や、分枝プローブにおける標識を結合させるための分枝のような、被検核酸とは無関係な任意の核酸が結合されたものであってもよい。プローブは、被検試料中に含まれる選択的スプライシングバリアントのmRNAの直接的な測定に用いることもできるし、mRNAをRT-PCR等の核酸増幅法で増幅した後、増幅された増幅核酸を測定する目的にも用いることができる。増幅産物をプローブで特異的に測定する場合、核酸増幅には、エキソンSVが増幅産物中に含まれるようにプライマーを設定する。この場合のプライマーは、選択的スプライシングバリアントに特異的なものである必要はなく、測定の特異性はプローブにより確保される。本発明はまた、配列番号:1で表される塩基配列を含む核酸とはハイブリダイズするが、配列番号:2で表される塩基配列を含む核酸が共存していても当該核酸とはハイブリダイズしない核酸、または、配列番号:2で表される塩基配列を含む核酸とハイブリダイズした場合にその3’末端がミスマッチとなる核酸をも提供する。このような核酸は、上述したプライマーやプローブとして用いることができる。このような核酸としては、配列番号:1で表される塩基配列におけるエキソンSVを含む領域とハイブリダイズするが、配列番号:2で表される塩基配列を含む核酸が共存していても当該核酸とはハイブリダイズしない核酸、または、配列番号:2で表される塩基配列を含む核酸とハイブリダイズした場合にその3’末端がミスマッチとなる核酸が、選択的スプライシングバリアントの特異的な測定のためには好ましい。このような本発明の核酸は、塩基数が10以上であることが好ましく、特に塩基数が15~35であることが好ましい。また、本発明の核酸は、配列番号:1で表される塩基配列またはその部分領域と同じ塩基配列または当該塩基配列のうち10以下の塩基が置換した塩基配列を有することが好ましく、特に配列番号:1で表される塩基配列またはその部分領域と同じ塩基配列をからなることが好ましい。このような本発明の核酸は、核酸増幅法のプライマーやプローブ等の、選択的スプライシングバリアントの測定用核酸として用いられうる。さらに、本発明は、上述した本発明の測定用核酸を含む、OATP1B3mRNAの選択的スプライシングバリアントの測定用キットをも提供する。キットに含まれる試薬類は、本発明の測定用核酸以外は周知のものであってよく、例えば、プライマーセットのほか、逆転写酵素、TaqDNAポリメラーゼ、dNTP、ランダムプライマー、RNase阻害剤、緩衝液等を含めて測定用キットにすることができる。あるいは、キットは、フォワード側プライマーおよびリバース側プライマーのみからなるプライマーセットとし、他の試薬類は、市販のRT-PCR用キット等を利用するようにしてもよい。上述した選択的スプライシングバリアントは、がんマーカーとして利用することができる。すなわち、本発明により提供される選択的スプライシングバリアントは、がん細胞組織において特異的に強く発現することが判明している。よって、本発明により提供される測定方法や測定用キットは、がんの検出に利用することができる。この際、検出対象とされるがんの種類は特に制限されず、例えば、大腸がん、膵臓がん、乳がん、肺がん、前立腺がん、食道がん、胃がん、肝臓がん、胆道がん、脾臓がん、腎がん、膀胱がん、子宮がん、卵巣がん、精巣がん、甲状腺がん、脳腫瘍、造血器腫瘍などの検出に利用されうる。特に、後述する実施例に記載のように、OATP1B3/ctは、ヒト大腸がん組織に加えて、ヒトの大腸がん由来の細胞LS180、HCT116およびヒトの膵臓がん由来の細胞PK45pにも強く発現していることが確認されている。これに対し、ヒト正常大腸由来の組織にはOATP1B3/ctの発現が確認されなかったことから、本発明により提供される選択的スプライシングバリアントは、大腸がんおよび膵臓がんのマーカーとして特に有用である。本発明の他の形態によれば、がんの予防および/または治療剤のスクリーニング方法が提供される。このスクリーニング方法は、まず、がん細胞を被検物質の存在下で培養する。そして、得られる培養細胞において、上述した本発明の選択的スプライシングバリアントを測定する。次いで、得られた測定結果を、上記被検物質の非存在下における場合と比較および/または評価する。具体的には、上述した各種がん由来のがん細胞株を、抗がん剤、抗がん候補物質、低分子化合物、天然有機高分子物質、天然の動植物の抽出物、ペプチドなどの被検物質の存在下で培養し、当該培養細胞における本発明の選択的スプライシングバリアントを測定検出、半定量、または定量し、選択的スプライシングバリアントの形態が、被検物質の非存在下における場合と比べて有意に減少しているときに、被検物質は上記細胞株が由来とするがんの予防および/または治療剤として有用である可能性があると判断する。本発明のスクリーニング方法において、ヒト大腸がん由来の細胞株例えば、LS180やHCT116を用いることで、ヒト大腸がんの予防および/または治療剤のスクリーニングをおこなうことができる。同様に、ヒト膵臓がん由来の細胞株例えば、PK45pを用いることで、ヒト膵臓がんの予防および/または治療剤のスクリーニングをおこなうことができる。その他の周知のがん腫瘍由来の細胞株についても、同様に用いることで各種がん腫瘍の予防および/または治療剤のスクリーニングをおこなうことが可能である。また、本発明のスクリーニング方法において、選択的スプライシングバリアントを測定する方法としては、上述した本発明の測定方法や測定用キットが同様に用いられうる。よって、ここでは詳細な説明を省略する。本発明者らの検討によれば、OATP1B3/ctmRNAから少なくとも4種のポリペプチドが発現しうることが判明した。具体的には、配列番号:5、配列番号:7、配列番号:9、および配列番号:11のそれぞれで表されるアミノ酸配列からなるポリペプチドが、OATP1B3/ctmRNAから発現しうることが確認された。これらのポリペプチドは、OATP1B3/wtmRNAからは理論上発現できず、OATP1B3/ctmRNAに特異的なものである。このため、これらのポリペプチドは、OATP1B3/ctmRNAと同様にがんマーカーとしての有用性を有するものである。上記の観点から、本発明の他の形態によれば、1配列番号:5、配列番号:7、配列番号:9、または配列番号:11で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド;および、2配列番号:5、配列番号:7、配列番号:9、または配列番号:11で表されるアミノ酸配列を含み、かつ、がん細胞またはがん組織において発現が増強するポリペプチド、あるいは、配列番号:5、配列番号:7、配列番号:9、または配列番号:11で表されるアミノ酸配列において、10以下のアミノ酸が置換、欠失、および/または挿入されたアミノ酸配列を含み、かつ、がん細胞またはがん組織において発現が増強するポリペプチド以下、機能的等価改変体とも称する;および、が提供される。2機能的等価改変体としては、配列番号:5、配列番号:7、配列番号:9、または配列番号:11で表されるアミノ酸配列を含み、かつ、がん細胞またはがん組織において発現が増強するポリペプチド、あるいは、配列番号:5、配列番号:7、配列番号:9、または配列番号:11で表されるアミノ酸配列において、0~10、好ましくは0~7、さらに好ましくは0~5、特に好ましくは0~2のアミノ酸が置換、欠失、および/または挿入されたアミノ酸配列を含み、かつ、がん細胞またはがん組織において発現が増強するポリペプチドが含まれる。がん細胞またはがん組織において発現が増強するとは、非がん細胞または非がん組織と比較してがん細胞またはがん組織において発現が2倍以上増強することを意味する。以上、本形態のポリペプチドについて説明したが、配列番号:5、配列番号:7、配列番号:9、または配列番号:11で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド、および上記機能的等価改変体を総称して、以下、本発明のポリペプチドとも称する。また、本発明のポリペプチドのうち、配列番号:5で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチドをf1-1、配列番号:7で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチドをf1-2、配列番号:9で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチドをf2、配列番号:11で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチドをf3とそれぞれ称する。本発明のポリペプチドとしては、f1-1またはf3が特に好ましい。本発明のさらに他の形態によれば、本発明のポリペプチドをコードする核酸もまた、提供される。ここで、本発明のポリペプチドであるf1-1をコードする塩基配列からなる核酸は、配列番号:5で表されるアミノ酸配列からなるf1-1、またはその機能的等価改変体をコードする塩基配列であれば特に制限はない。好ましくは、配列番号:5で表されるアミノ酸配列をコードする塩基配列からなる核酸であり、さらに好ましくは、配列番号4で表される塩基配列からなる核酸である。同様に、本発明のポリペプチドであるf1-2をコードする塩基配列からなる核酸は、配列番号:7で表されるアミノ酸配列からなるf1-2、またはその機能的等価改変体をコードする塩基配列であれば特に制限はない。好ましくは、配列番号:7で表されるアミノ酸配列をコードする塩基配列からなる核酸であり、さらに好ましくは、配列番号6で表される塩基配列からなる核酸である。また、本発明のポリペプチドであるf2をコードする塩基配列からなる核酸は、配列番号:9で表されるアミノ酸配列からなるf2、またはその機能的等価改変体をコードする塩基配列であれば特に制限はない。好ましくは、配列番号:9で表されるアミノ酸配列をコードする塩基配列からなる核酸であり、さらに好ましくは、配列番号8で表される塩基配列からなる核酸である。さらに、本発明のポリペプチドであるf3をコードする塩基配列からなる核酸は、配列番号:11で表されるアミノ酸配列からなるf3、またはその機能的等価改変体をコードする塩基配列であれば特に制限はない。好ましくは、配列番号:11で表されるアミノ酸配列をコードする塩基配列からなる核酸であり、さらに好ましくは、配列番号10で表される塩基配列からなる核酸である。また、本発明のさらに他の形態によれば、上記核酸を含む発現ベクター、当該発現ベクターで形質転換された細胞もまた、提供される。本発明の発現ベクターや細胞は、従来公知の知見を参照することにより作製することができる。例えば、単離された本発明の核酸を、適当なベクターDNAに再び組込むことにより、真核生物または原核生物の宿主細胞を形質転換させることができる。また、これらのベクターに適当なプロモーターおよび形質発現に関連する配列を導入することにより、それぞれの宿主細胞において核酸を発現させることが可能である。本発明の発現ベクターは、本発明の核酸を含む限り、特に限定されるものではなく、例えば、用いる宿主細胞に応じて適宜選択した公知の発現ベクターに、本発明の核酸を挿入することにより得られる発現ベクターを挙げることができる。また、本発明の細胞も、本発明の発現ベクターでトランスフェクションされ、本発明の核酸を含む限り、特に限定されるものではなく、例えば、本発明の核酸が、宿主細胞の染色体に組み込まれた細胞であってもよいし、あるいは、本発明の核酸を含む発現ベクターの形で含有する細胞であってもよい。また、本発明のポリペプチドを発現している細胞であってもよいし、あるいは、本発明のポリペプチドを発現していない細胞であってもよい。本発明の細胞は、例えば、本発明の発現ベクターにより、所望の宿主細胞をトランスフェクションすることにより得ることができる。上記で得られる所望の細胞は、常法に従い培養することができ、該培養により本発明のポリペプチドが生産される。該培養に用いられる培地としては、採用した宿主細胞に応じて慣用される各種のものが適宜選択されうる。上記により、形質転換細胞に生産される本発明のポリペプチドは、その物理的性質や生化学的性質等を利用した各種の公知の分離操作法により、分離精製することができる。本発明のポリペプチドは、マーカー配列とインフレームで融合して発現させることで、その発現の確認、精製等が可能になる。マーカー配列としては、例えば、FLAGepitope、Hexa-Histidinetag、Hemagglutinintag、mycepitopeなどがある。また、マーカー配列とポリペプチドとの間にエンテロキナーゼ、ファクターXa、トロンビンなどのプロテアーゼが認識する特異的なアミノ酸配列を挿入することにより、マーカー配列部分をこれらのプロテアーゼにより切断除去することも可能である。本発明の核酸は、それ自体、またはその一部をがんの検出方法においてハイブリダイズプローブとして用いることができ、がんの検出に有用である。また、本発明のポリペプチドは、本発明のポリペプチドを特異的に認識する抗体の作製や、発現レベルを検出定量する際のコントロールとして用いることができる。本発明によれば、本発明のポリペプチドに結合する抗体以下、本発明の抗体とも称するもまた、提供されうる。本発明の抗体の製造方法は、特に限定されるものではない。本発明の抗体例えば、ポリクローナル抗体、モノクローナル抗体は、例えば、各種動物に配列番号:5で表されるアミノ酸配列を含み、かつ、がん細胞またはがん組織において発現が増強するポリペプチド、配列番号:5で表されるアミノ酸配列において1または数個のアミノ酸が置換、欠失、および/または挿入されたアミノ酸配列を含み、かつ、がん細胞またはがん組織において発現が増強するポリペプチド、あるいは、配列番号:5で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチドの全部またはその断片を直接投与することにより、得ることができる。また、前記ポリペプチドをコードする遺伝子を導入したプラスミドを用いてDNAワクチン法Raz,E.etal.,Proc.Natl.Acad.Sci.USA,91,9519-9523,1994;Donnelly,J.J.etal.,J.Infect.Dis.,173,314-320,1996によっても得ることができる。ポリクローナル抗体は前記ポリペプチドまたはその断片をフロイント完全アジュバントなどの適当なアジュバントに乳濁し、腹腔、皮下または静脈等に免疫して感作した動物、例えばウサギ、ラット、ヤギ、またはニワトリ等の血清または卵から製造される。このように製造されたポリクローナル抗体は常法のタンパク質単離精製法により、分離精製することができ、常法のタンパク質単離精製法としては例えば、遠心分離、透析、硫酸アンモニウムによる塩析、DEAE-セルロース、ハイドロキシアパタイト、プロテインAアガロース等によるクロマトグラフィー法が挙げられる。モノクローナル抗体は、ケーラーとミルスタインの細胞融合法Kohler,G.andMilstein,C.,Nature,256,495-497,1975により当業者が容易に製造することが可能である。本発明のさらに他の形態によれば、配列番号4、配列番号6、配列番号8、または配列番号10で表される塩基配列を含む核酸とストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、少なくとも15塩基を有する核酸もまた、提供される。なお、ストリンジェントな条件については上述した通りである。このような核酸は、本発明の核酸を検出、単離するためのプローブとして、また、本発明の核酸を増幅するためのプライマーとして利用することが可能である。プライマーとして用いる場合には、通常、15bp~100bp、好ましくは15bp~40bpの鎖長を有する。プライマーとして好ましい塩基配列は、後述する実施例の9.緑色蛍光タンパク質GFP融合ctOATP1B3ペプチド発現プラスミドの作製においてf1-1、f1-2、f2およびf3のそれぞれを増幅するのに用いられているプライマーの塩基配列が挙げられる。また、プローブとして用いる場合には、本発明の核酸の一部もしくは全部の配列またはその相補配列を有し、少なくとも15bpの鎖長のDNAが用いられる。上記核酸を用いたプローブやプライマーは、がんの検出に利用することができる。なお、本発明に基づいて、本発明の核酸の塩基配列またはその断片を含むオリゴヌクレオチドプローブのアレイを構築することもできる。アレイ技法は公知で、遺伝子発現を解析するために用いられているChee,M.etal.1996Science,.274,610-613。本発明のポリペプチドは、がんの検出方法にも適用されうる。すなわち、本発明の他の形態によれば、生体から分離した被検試料中の、本発明のポリペプチドの量を測定することを含む、がんの検出方法が提供される。この際、上述した本発明の抗体を測定に用いることが好ましい。また、当該抗体を含む、がんの検出用キットも提供されうる。以下、この形態について、より詳細に説明する。被検試料中の、本発明のポリペプチドの検出は、例えば、被検試料を各種の分子量測定法、例えば、ゲル電気泳動や、各種の分離精製法例:イオン交換クロマトグラフィー、疎水性クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィー、逆相クロマトグラフィーなど、イオン化法例:電子衝撃イオン化法、フィールドディソープション法、二次イオン化法、高速原子衝突法、マトリックス支援レーザー脱離イオン化MALDI法、エレクトロスプレーイオン化法など、質量分析計例:二重収束質量分析計、四重極型分析計、飛行時間型質量分析計、フーリエ変換質量分析計、イオンサイクロトロン質量分析計などを組み合わせる方法等に供し、本発明のポリペプチドの分子量と一致するバンドもしくはスポット、またはピークを検出することによりおこなうことができるが、これらに限定されない。本発明のポリペプチドはアミノ酸配列が既知であることから、当該アミノ酸配列を認識する抗体を作製して、ウエスタンブロッティングや各種イムノアッセイにより本発明のポリペプチドを検出する方法が、より好ましく用いられうる。なお、当該抗体の作製方法については、上述した通りである。本発明の抗体を用いて本発明のポリペプチドを検出する方法は、最適化されたイムノアッセイ系を構築してこれをキット化すれば、質量分析装置のような特殊な装置を使用することなく、高感度かつ高精度に本発明のポリペプチドを検出することができる点で、特に有用である。本発明の抗体を用いる本発明のがんの検出方法は、特に制限されないが、被検試料中の抗原量に対応した抗体、抗原または抗体-抗原複合体の量を化学的または物理的手段により検出し、これを既知量の抗原を含む標準液を用いて作製した標準曲線より算出する測定法であれば、いずれの測定法を用いてもよい。例えば、ネフロメトリー、競合法、イムノメトリック法およびサンドイッチ法等が好適に用いられる。標識物質を用いる測定法に用いられる標識剤としては、例えば、放射性同位元素、酵素、蛍光物質、発光物質などが用いられる。放射性同位元素としては、例えば、125I、131I、3H、14Cなどが用いられる。上記酵素としては、安定で比活性の大きなものが好ましく、例えば、βガラクトシダーゼ、βグルコシダーゼ、アルカリフォスファターゼ、パーオキシダーゼ、リンゴ酸脱水素酵素などが用いられる。蛍光物質としては、例えば、フルオレスカミン、フルオレセインイソチオシアネートなどが用いられる。発光物質としては、例えば、ルミノール、ルミノール誘導体、ルシフェリン、ルシゲニンなどが用いられる。さらに、抗体あるいは抗原と標識剤との結合にビオチンアビジン系を用いることもできる。抗原または抗体の不溶化に当っては、物理吸着を用いてもよく、また通常タンパク質あるいは酵素等を不溶化、固定化するのに用いられる化学結合を用いる方法でもよい。担体としては、アガロース、デキストラン、セルロースなどの不溶性多糖類、ポリスチレン、ポリアクリルアミド、シリコン等の合成樹脂、またはガラス等が挙げられる。サンドイッチ法においては、不溶化した本発明の抗体に被検試料を反応させ1次反応、さらに標識化した別の本発明の抗体を反応させ2次反応た後、不溶化担体上の標識剤の量活性を測定することにより、被検試料中の本発明のペプチド量を定量することができる。1次反応と2次反応は逆の順序におこなっても、また、同時におこなってもよいし時間をずらしておこなってもよい。本発明のポリペプチドに対するモノクローナル抗体を、サンドイッチ法以外の測定システム、例えば、競合法、イムノメトリック法あるいはネフロメトリーなどに用いることもできる。競合法では、被検試料中の抗原と標識抗原とを抗体に対して競合的に反応させた後、未反応の標識抗原Fと、抗体と結合した標識抗原Bとを分離しB/F分離、B/Fいずれかの標識量を測定し、被検試料中の抗原量を定量する。本反応法には、抗体として可溶性抗体を用い、B/F分離をポリエチレングリコール、前記抗体に対する第2抗体などを用いる液相法、および、第1抗体として固相化抗体を用いるか、あるいは、第1抗体は可溶性のものを用い第2抗体として固相化抗体を用いる固相化法とが用いられる。イムノメトリック法では、被検試料の抗原と固相化抗原とを一定量の標識化抗体に対して競合反応させた後固相と液相を分離するか、または、被検試料中の抗原と過剰量の標識化抗体とを反応させ、次に固相化抗原を加え未反応の標識化抗体を固相に結合させた後、固相と液相を分離する。次に、いずれかの相の標識量を測定し被検試料中の抗原量を定量する。また、ネフロメトリーでは、ゲル内または溶液中で抗原抗体反応の結果生じた不溶性の沈降物の量を測定する。被検試料中の抗原量が僅かであり、少量の沈降物しか得られない場合にもレーザーの散乱を利用するレーザーネフロメトリーなどが好適に用いられる。これら個々の免疫学的測定法を本発明の検出方法に適用するにあたっては、特別の条件、操作等の設定は必要とされない。それぞれの方法における通常の条件、操作法に当業者の通常の技術的配慮を加えて本発明のポリペプチドの測定系を構築すればよい。これらの一般的な技術手段の詳細については、総説、成書などを参照することができる。例えば、入江寛編ラジオイムノアッセイ講談社、昭和49年発行、入江寛編続ラジオイムノアッセイ講談社、昭和54年発行、石川栄治ら編酵素免疫測定法医学書院、昭和53年発行、石川栄治ら編酵素免疫測定法第2版医学書院、昭和57年発行、石川栄治ら編酵素免疫測定法第3版医学書院、昭和62年発行、MethodsinENZYMOLOGYVol70、同書Vol73、同書Vol74、同書Vol84、同書Vol92、同書Vol121以上、アカデミックプレス社発行などを参照することができる。あるいは、本発明の抗体を用いる別の本発明の検出方法として、当該抗体を上述したような質量分析計に適合しうるプローブの表面上に固定化し、当該プローブ上の当該抗体に被検試料を接触させ、当該抗体に捕捉された生体試料成分を質量分析にかけ、当該抗体が認識するマーカーペプチドの分子量に相当するピークを検出する方法が挙げられる。上記のいずれかの方法により、被検試料において、本発明のポリペプチドが、コントロール試料におけるレベルと統計学的に有意な差をもって検出された場合には、被検試料中にがん細胞またはがん組織が含まれている可能性が高いと診断することができる。本発明のさらに他の形態では、医薬が提供される。当該医薬は、上述した本発明のポリペプチドもしくはその断片、または本発明の核酸もしくはその断片を含み、特異的な細胞傷害性T細胞CTLを誘導するためのものである。当該医薬は、好ましくはがんワクチンである。以下、この形態について、より詳細に説明する。本発明の医薬が本発明のポリペプチドまたはその断片を含む場合、当該ポリペプチドまたはその断片は、HLAと結合して特異的な細胞傷害性T細胞CTLを誘導しうるものである必要がある。この観点から、当該ポリペプチドまたはその断片は、本発明のポリペプチドにおける連続する8~11個のアミノ酸残基からなることが好ましい。なお、特異的なCTLを誘導するポリペプチドの断片は、本技術分野における公知の知見を参照して容易に作製することができる。HLAと結合して特異的なCTLを誘導しうるとは、本発明のポリペプチドもしくはその断片、または本発明の核酸もしくはその断片がHLAと結合して複合体を形成し、かかる複合体をCTLが認識できることをいう。換言すれば、本発明のポリペプチドもしくはその断片、または本発明の核酸もしくはその断片が、HLAとの結合活性を有し、かつ、HLAとの複合体の形で、特異的なCTLを誘導する活性を有することを意味する。一方、本発明の医薬が本発明の核酸またはその断片を含む場合、当該核酸がコードするアミノ酸配列を有するポリペプチドは、それ自体がCTLにより認識され、当該CTLを活性化するか、そのような活性を有するポリペプチド断片を与えることができ、腫瘍抗原として機能しうる。本形態において用いられる核酸またはその断片は、本発明のポリペプチドをコードする領域に対応する少なくとも24個以上の塩基からなるポリヌクレオチドまたはその相補鎖であることが好ましい。このようなポリヌクレオチドは、例えば公知のタンパク質発現系を利用して発現ペプチドを確認することにより選択されうる。本発明の医薬は、例えば、がんワクチンとして使用することができる。1種類のポリペプチドもしくはその断片または核酸もしくはその断片のみでもがんワクチンとして有効であるが、複数種類のものを組み合わせて使用するのが好ましい。これは、がん患者のCTLが複数の異なる種類の腫瘍抗原を認識する細胞の集団であることから、複数種類の腫瘍抗原を組み合わせてがんワクチンとして使用する方がより効果的であると期待されるためである。また、本発明のポリペプチドや本発明の核酸は、これら以外のポリペプチドや核酸と併用されてもよい。本発明により提供されるがんワクチンは、適当なアジュバントの存在または非存在下で、単独で、または製薬的に許容される担体と結合して使用することができる。担体は、人体に有害な作用を起こさなければ特に制限はなく、例えば、セルロース、重合アミノ酸、アルブミン等が使用できる。剤形は、ペプチド製剤について周知の剤形が選択可能である。投与量は、CTLによる認識性、治療すべき疾患、患者の年齢、体重等により変化するが、ペプチドの場合、活性本体として、通常、00001mg~1000mg、好ましくは0001mg~1000mg、より好ましくは01mg~100mg、さらに好ましくは01~10mg/日/成人ヒトである。これを数日、数週、または数ヶ月に1回投与すればよい。本発明の医薬はまた、本発明のポリペプチドまたはその断片をコードする核酸またはその断片を適当なベクターに組み込み、invivoまたはexvivoで導入するのに利用することができる。ベクターとしては、例えばレトロウイルス、アデノウイルス、ワクシニアウイルス等が挙げられるが、レトロウイルス系が好ましい。投与量は、CTLによる認識性により変化するが、DNA含量として0.1μg~100mg/日/成人ヒト、好ましくは1μg~50mg/日/成人ヒトである。これを数日、数週、または数ヶ月に1回投与すればよい。以下、実施例および参考例により本発明をより具体的に説明するが、本発明の技術的範囲はこれらに限定されない。1.プライマーゲノムDNAコンタミネーションチェック、5’cDNA末端のRNAリガーゼ媒介迅速増幅RLMRACERNAligasemediatedrapidamplificationof5’cDNA、逆転写PCRRTPCRReverseTranscriptionPolymerazeChainReaction、cDNAクローニング、定量的リアルタイムPCRQuantitativerealtimePCR、およびGFP融合ペプチド発現プラスミドからのペプチド発現に用いたプライマーは、インビトロジェンカールスバッド,カリフォルニア州,アメリカまたはグライナー-バイオ-ワンタウフキルヒェン,ドイツに依頼して合成したものであり、それぞれ下記の表1~表6に示す塩基配列を有する。2.細胞培養法ヒト結腸がん由来細胞株であるLS180細胞は大日本住友製薬大阪より購入した。ヒト大腸がん由来細胞株であるHCT116細胞はボーゲルシュタイン博士Dr.Vogelsteinジョンズホプキンス大学、ボルチモア、メリーランド州よりご恵与いただいた。ヒト膵臓がん由来細胞株であるPK45p細胞は東北大学加齢医学研究所付属医用細胞資源センター仙台より入手した。LS180細胞およびPK45p細胞は、それぞれ10非働化ウシ胎児血清FBSジェミニバイオ-プロダクツ,カリフォルニア州および50単位/mLペニシリン-50μg/mLストレプトマイシンインビトロジェンを加えた最小必須培地MEMMinimumEssentialMediumインビトロジェンまたはRPMIRoswellParkMemorialInstitute1640培地インビトロジェンを培地とし、5CO2/95Airを気相とした37°CのCO2インキュベーター内にて培養した。3.実験検体白人種肝検体は、HABHumanandAnimalBridging協議会東京より入手した。上記検体は、米国立疾病研究互助組織NDRINationalDiseaseResearchInterchangeフィラデルフィア,ペンシルバニア州を介して米国から輸入された移植不適合のヒト肝組織である。なお、上記肝組織は肝炎等の感染症のないものを用いた。なお、本研究におけるこれら検体の研究利用は、千葉大学大学院薬学研究院倫理委員会において事前に承認されている。4.TotalRNAの抽出細胞からのtotalRNA抽出は、FastPureTMRNAIsolationKitタカラバイオ株式会社,滋賀を用いてプロトコールに従いおこなった。抽出したtotalRNAにゲノムDNAの混入がないことを、20μL中にGoTaqGreenMasterMixプロメガ,マディソン,ワイオミング州10μL、並びに、プライマー上記表1に記載のヒトグリセルアルデヒド-3-デヒドロゲナーゼGAPDHFおよびGAPDHR各0.5μL、RNA1μLを含む反応溶液を用いたPCRにより確認した。PCR反応は、95°Cにて30秒間加熱した後、95°C10秒、50°C10秒および72°C30秒のサイクルを40回おこなった。白人種肝からのtotalRNA抽出についても、FastPureTMRNAIsolationKitを用いてプロトコールに従いおこなった。ヒト大腸がん正常大腸ペアtotalRNAは、アプライドバイオシステムズフォスターシティ,マサチューセッツ州より購入した。5.SLCO1B3遺伝子の転写開始点の決定GeneRacerTMKitインビトロジェンを用いたRLM-5’-RACE法により、SLCO1B3遺伝子の転写開始点を決定した。テンプレートとしてヒト大腸がん由来totalRNAまたは白人種肝由来totalRNAを用い、手順はプロトコールに従いおこなった。PCR反応は、20μL中にGoTaqGreenMasterMix10μL、Reversetranscriptionテンプレート1μL、10μMGeneRacerTM5’プライマーおよびReversegenespecificプライマー上記表2に記載のSLCO1B3648R各0.5μLを含むPCR反応溶液を調製し、これを94°Cにて2分間加熱した後、94°C30秒、68°C30秒、72°C1分のサイクルを5回、94°C30秒、66°C30秒、72°C1分のサイクルを5回、94°C30秒、65°C30秒、72°C1分のサイクルを30回繰り返したTouch-downPCRをおこなった。このTouch-downPCRの後、PCR反応溶液を滅菌水で5倍希釈したものをテンプレートとして、Nested-PCRをおこなった。Nested-PCRは、20μL中にGoTaqGreenMasterMix10μL、テンプレート1μL、10μMGeneRacerTM5’NestedプライマーおよびReverseNestedgenespecificプライマー上記表2に記載のSLCO1B3424Rnest各0.5μLを含むPCR反応溶液を調製し、これを95°Cにて30秒間加熱した後、95°C10秒、53°C10秒および72°C30秒のサイクルを40回繰り返した。PCR産物は3アガロースゲル電気泳動をおこない、エチジウムブロマイド染色により可視化した。電気泳動の結果を図3に示す。図3に示すように、白人種肝由来totalRNAをテンプレートとして用いたサンプルでは、既報の転写開始点図1に示すTSS由来のバンドが確認された。これに対し、ヒト大腸がん由来totalRNAをテンプレートとして用いたサンプルでは、既報の転写開始点由来のバンドよりも塩基長の短いバンドが確認された。この結果から、ヒト大腸がん由来OATP1B3mRNAにおいては、既報とは異なる既報のものよりも下流3’側に位置する転写開始点が存在することが示唆された。なお、図3に示すNontemplatecontrolとは、テンプレートを含まない陰性コントロールである後述する図5におけるNTCも同旨である。続いて、上記で得られたNested-PCR産物を含むDNA断片を分離精製した後、DynaExpressTAPCRCloningKit株式会社バイオダイナミクス研究所、東京を用いてpTAC-1ベクターに挿入し、アンピシリンを用いて選択した。プラスミドDNAはPlasmidMiniprepKitバイオ-ラッドラボラトリーズを用いて精製した。得られたプラスミドDNAの塩基配列は、CEQTMDTCSQuickStartMixベックマンコールター、フラートン、カリフォルニア州を用いてサイクルシークエンス反応をおこない、CEQ2000XLDNAanalysissystemベックマンコールターにより解析し、SLCO1B3遺伝子の新規な転写開始点を同定した。SLCO1B3遺伝子の新規転写開始点付近の塩基配列をヒトゲノムDNAのデータベースと照合したところ、新規転写開始点はSLCO1B3遺伝子のイントロン2の領域内に存在し、さらにここに新たなエキソンエキソンSVが存在することが明らかとなった。また、このエキソンSVはOATP1B3/wtのエキソン3へとスプライシングされていた図4を参照。6.cDNAの作製およびRT-PCR法によるmRNA発現解析上記4.に記載の手法により抽出したLS180細胞totalRNA、PK45p細胞、ヒト大腸がん/正常大腸ペアRNAおよび白人種肝由来のtotalRNAをテンプレートとして用い、HighCapacitycDNAReverseTranscriptionkitアプライドバイオシステムズを用いて逆転写反応をおこない、cDNAを作製した。このcDNAをテンプレートとしてRT-PCRをおこない、新規OATP1B3mRNAの発現量を解析した。PCRは、20μL中にGoTaqGreenMasterMix10μL、テンプレートcDNA1μL、10μMForwardおよびReverseプライマー上記表3に記載のSLCO1B3TSSincancer33FおよびSLCO1B3TSSincancer145R各0.5μLを含むPCR反応溶液を調製し、これを95°Cにて30秒間加熱した後、95°C10秒、各プライマーに適したアニーリング温度上記表3に記載のアニーリング温度10秒および72°C15~20秒のサイクルを38回おこなった。PCR産物は3アガロースゲル電気泳動をおこない、エチジウムブロマイド染色により可視化した。電気泳動の結果を図5に示す。図5に示すように、ヒト大腸がん組織に加え、大腸がん由来LS180細胞およびHCT116細胞、膵臓がん由来PK45p細胞においても新規OATP1B3mRNAの発現が認められた。一方、正常ヒト大腸組織においてはこのmRNAの発現は認められなかった。これらの結果より、新規OATP1B3mRNAはがん細胞/組織に高く発現する分子種であると考えられることから、これをOATP1B3/ctとした。7.OATP1B3/ctのcDNAクローニングOATP1B3/ctのcDNAクローニングは、ヒト大腸がん由来のcDNAをテンプレートとして、上記表4に記載のプライマーセットctSLCO1B3cloningF33およびctSLCO1B3cloning2149R並びにPrimeSTARHSDNApolymeraseタカラバイオ株式会社,滋賀を用いたPCRによりおこなった。なお、表4に示すように、OATP1B3/ctのcDNAクローニングに用いたフォワードプライマーは、上記6.cDNAの作製およびRT-PCR法によるmRNA発現解析のRT-PCRに用いたSLCO1B3TSSincancer33Fと同一である。PCRは94°C3分の後、98°C10分、58°C5秒、72°C2分30秒を40サイクル繰り返し、72°C3分を最終ステップとした条件でおこなった。得られたPCR産物は1アガロースゲル電気泳動により分離し、抽出精製した後、pCRBluntIITOPOvectorインビトロジェンに挿入した。得られた構築物をXbaIニッポンジーン、東京およびBamHIニッポンジーンで処理することにより、OATP1B3/ctcDNAを切り出し、これを同様に処理したpcDNA31Neovectorインビトロジェンとライゲーションすることにより、OATP1B3ctpcDNA31を作製した。なお、同様の手法により、OATP1B3/wtのcDNAクローニングもおこなった。具体的には、白人種肝由来のcDNAをテンプレートとして、上記表4に記載のプライマーセットSLCO1B3F27およびSLCO1B32184R並びにKODplusPolymeraseTOYOBO、大阪を用いたPCRによりおこなった。PCR反応は94°C3分の後、94°C30秒、48°C30秒、68°C2分30秒を35サイクル繰り返し、68°C5分を最終ステップとした条件でおこなった。得られたPCR産物は1アガロースゲル電気泳動により分離し、抽出精製した後、pCRBluntIITOPOvectorインビトロジェンに挿入した。得られた構築物をApaIニッポンジーンおよびBamHIで処理することによってOATP1B3/wtcDNAを切り出し、これを同様に処理したpcDNA31Neovectorとライゲーションすることにより、OATP1B3wtpcDNA31を作製した。上記で作製した2つのプラスミド中のOATP1B3ctまたはOATP1B3wtの塩基配列を、CEQ2000DyeterminatorCycleSequencingwithQuickStartKitベックマンコールターおよびCEQ2000XLDNAanalysissystemベックマンコールターを用いて解析した。図1には、これにより配列決定されたOATP1B3/ctのcDNA配列配列番号:1が、OATP1B3/wtのcDNA配列RefseqAccessionNo.NM_019844、配列番号:2とともに示されている。また、図1および図4に示すように、OATP1B3/ctでは、OATP1B3/wtのエキソン1およびエキソン2が欠失しており、これに代えてエキソンSVが存在し、OATP1B3/wtのエキソン3へとスプライシングされていることが確認される。8.定量的リアルタイムPCRによるmRNA発現解析上記6.に記載の手法により作製したGHLpool5つの日本人肝サンプルから調製したcDNAプール、HHLpool5つの白人種肝サンプルから調製したcDNAプール、ヒト大腸がん組織、LS180細胞、PK45p細胞、およびHCT116細胞のそれぞれのcDNA、並びに、上記7.に記載の手法により作製したプラスミドを用いて定量的リアルタイムPCRをおこない、検量線法を用いてOATP1B3/ctおよびOATP1B3/wtのそれぞれのmRNAの定量をおこなった。PCRおよびDNA増幅の検出には、ABIPRISM登録商標7000アプライドバイオシステムズを用いた。OATP1B3/ctmRNAの検出は、20μL中にcDNAテンプレート1μL、2×FastStartUniversalProbeMasterロシュ、ペンツバーグ、ドイツ10μL、UniversalProbe590.2μL、および上記表5に記載のプライマーセットctSLCO1B3Left5976、およびctSLCO1B3Right130151各0.4μLを含むPCR反応溶液を調製し、これを95°C5分の後、95°C15秒、60°C1分のサイクルを45回繰り返した2stepPCRでおこなった。一方、OATP1B3/wtmRNAの検出は、20μL中にcDNAテンプレート1μL、2×SYBERPremixExTaqIIタカラバイオ10μL、50×ROXReferenceDyeタカラバイオ0.4μLおよび上記表5に記載のプライマーセットSLCO1B3F153forrealtime、およびSLCO1B3R194forrealtime各0.8μLを含むPCR反応溶液を調製し、これを95°C20秒の後、95°C5秒、60°C33秒のサイクルを40回繰り返した2stepPCRでおこなった。検量線用サンプルは、OATP1B3/ctmRNA測定には上記7.に記載の手法により作製したOATP1B3/pTOPOをテンプレートとし、1ウェルあたりのモル数が2.86×10-23~1.43×10-17モル内の5点を用いて作製した。一方、OATP1B3/wtmRNA測定には上記7.に記載の手法により作製したOATP1B3/pcDNA3.1-をテンプレートとし、1ウェルあたりのモル数が1.09×10-23~1.09×10-17モル内の5点を用いて作製した。PCRおよびDNA増幅の検出はcDNAサンプルと同様におこなった。また、検量線は最小二乗法により直線回帰して得た。定量的リアルタイムPCRの結果得られたmRNA発現プロファイルを図6に示す。図6のAは、各組織細胞におけるOATP1B3/ctの発現レベルを示す。また、図6のBは、各組織細胞におけるOATP1B3/wtの発現レベルを示す。なお、図6に示す棒グラフは、OATP1B3mRNAのコピー数を、3回の独立した実験における平均値±標準偏差として示したものである。さらに、図6のCは、発現レベルの比OATP1B3/ctのコピー数/OATP1B3/wtのコピー数を示す。図6のAに示すように、totalRNA1ng中に存在するOATP1B3/ctmRNAコピー数はGHLpool日本人肝では8であり、HHLpool白人種肝では4であった。これに対し、ヒト大腸がん組織hcolonTu1および2ではそれぞれ1812、89であり、また、LS180細胞では2411、PK45p細胞では289、HCT116細胞では644であった。一方、OATP1B3/wtmRNAコピー数はGHLpoolでは12187、HHLpoolでは7473であり、hcolonTu1および2ではそれぞれ30、3であり、また、LS180細胞では865、PK45p細胞では2、HCT116細胞では172であった。したがって、OATP1B3/ctmRNA発現量はOATP1B3/wtmRNA発現量に対して、ヒト大腸がん組織であるhcolonTu1および2でそれぞれ60倍、30倍、ヒト大腸がん由来細胞であるLS180細胞で2.8倍、PK45p細胞で144.5倍、HCT116細胞で3.7倍と高かった図6のC。一方、GHLpoolおよびHHLpoolでは、OATP1B3ctmRNAの発現量はOATP1B3/wt発現量のそれぞれ約1/1500、約1/1700であった。以上のことから、ヒト大腸がん組織ではOATP1B3/ctmRNAがほぼ特異的に発現しており、また、ヒト大腸がん由来細胞においても、OATP1B3/ctmRNAが非常に優位に発現していることが示される。つまり、本願の発明者らによって、がん細胞組織で発現しているのは既報のOATP1B3/wtではなく、今回新たに発見された選択的スプライシングバリアントであるということが明らかとされたのである。9.緑色蛍光タンパク質GFP融合ctOATP1B3ペプチド発現プラスミドの作製図7に示すように、OATP1B3/ctmRNAの各フレームには推定オープンリーディングフレームORF;Openreadingframeが存在する。フレーム1の2つのORFはそれぞれ10アミノ酸からなるペプチドおよび27アミノ酸からなるペプチドをコードすると推定されるf1-1、f1-2。また、フレーム2のORFはOATP1B3/wtのフレームの途中を開始コドンとしてそのままOATP1B3/wtの終止コドンを共有する655アミノ酸からなるタンパク質をコードすると推定されるf2。さらに、フレーム3のORFは43アミノ酸からなるペプチドをコードすると推定されるf3。これら翻訳産物の発現を解析するため、OATP1B3/ctmRNAのフレーム1およびフレーム3に存在するペプチドコード領域f1-1、f1-2、f3並びに、フレーム2に存在するタンパク質コード領域のN末端領域20アミノ酸f2のC末端側のそれぞれにGFPを融合したタンパク質f1-1/GFP、f1-2/GFP、f2/GFP、f3/GFPを発現させるプラスミドを作製した。OATP1B3ctpcDNA31をテンプレートとして、f1-2領域、f2領域およびf3領域を表6に示すプライマーを用いてPCR95°C30秒の後、95°C10秒、60°C10秒、72°C20秒を40回繰り返し、72°C10秒を最終ステップにより増幅した。また、GFPおよびf1-1/GFPについては、pAcGFPc1をテンプレートとして表6に示すプライマーを用いてPCR94°C3分の後、98°C10秒、59°C5秒、72°C50秒を40回繰り返し、72°C3分を最終ステップにより増幅した。GFPのPCR産物をBamHI処理し、同様にBamHI処理したf1-2、f2およびf3のそれぞれのPCR産物とライゲーションした。これをテンプレートとして表6に示すプライマーを用いてPCR94°C2分の後、94°C10秒、60°C30秒、72°C60秒を35回繰り返し、72°C30秒を最終ステップにより増幅した。得られたf1-2/GFP、f3/GFPはDynaExpressTAPCRCloningKitを用いてpTAC1vectorに挿入した。また、得られたf1-1/GFP、f2/GFPはpCRBluntIITOPOvectorインビトロジェンに挿入した。これらプラスミドをXbaIおよびKpnIで処理し、同様に処理したpcDNA31Neoとライゲーションして、f11GFPpcDNA31、f12GFPpcDNA31、f2GFPpcDNA31、f3GFPpcDNA31を作製した。10.リバーストランスフェクションmCherrypcDNA31320ng/ウェルと、各GFP融合ペプチド発現プラスミドまたはemptypcDNA31Neomock320ng/ウェルとの混合物にOPTIMEM登録商標インビトロジェン100μL/ウェル、およびPlusReagentインビトロジェン0.5μL/ウェルを混合し、LipofectaminLTXインビトロジェン1.6μL/ウェルを加え293FT細胞3.5×105細胞/ウェルとともに24ウェルプレートに播種した。播種から24時間後、GFP由来の緑色蛍光およびmCherry由来の赤色蛍光をOlympusFluoviewver23オリンパス、東京を用いて観察した。結果を図8に示す。ここで、図8において、緑色はGFP由来の蛍光であり、赤色はトランスフェクションコントロールであるmCherry由来の蛍光である。また、両蛍光の重ね合わせをMergeとして示し、微分干渉像をPhaseとして示す。なお、解析に用いたレーザー強度照射時間は全て等しくした。図8に示すように、トランスフェクションした293FT細胞においてf1-1/GFPおよびf3/GFP由来と考えられる強い蛍光が認められた図8bおよびe。また、f2/GFP図8d由来の蛍光も認められた。一方、f1-2/GFPについては、非常に弱い蛍光が認められた図8c。また、同時におこなったmockを用いた実験では緑色蛍光は認められなかった図8a。なお、いずれの実験においてもmCherry由来の赤色蛍光は同等の発色レベルを示した。"