"少なくとも100L/m2.h.psi14.5L/m2.h.kPaの水量流動率で、少なくとも1つの生物有機体を含む試料にフィルタ膜を通過させる工程であって、前記フィルタ膜は、1.0μmを超えないバブルポイント孔径を備え、それによって、前記膜の表面上に少なくとも1つの生物有機体を保持する、工程と、前記フィルタ膜の表面上に保持される、前記少なくとも1つの生物有機体を検出する工程と、を含む、方法。前記水量流動率が、少なくとも300L/m2.h.psi43.5L/m2.h.kPaである、請求項1に記載の方法。前記水量流動率が、少なくとも1000L/m2.h.psi144.9L/m2.h.kPaである、請求項1に記載の方法。前記水量流動率が、少なくとも3000L/m2.h.psi434.8L/m2.h.kPaである、請求項1に記載の方法。前記バブルポイント孔径が、0.8μmを超えない、請求項1~4のいずれか一項に記載の方法。前記バブルポイント孔径が、0.2μmを超えない、請求項1~5のいずれか一項に記載の方法。前記試料中の少なくとも30の前記生物有機体が、前記フィルタ膜の表面上に保持される、請求項1~6のいずれか一項に記載の方法。前記試料中の少なくとも70の前記生物有機体が、前記フィルタ膜の表面上に保持される、請求項1~7のいずれか一項に記載の方法。前記試料中の少なくとも90の前記生物有機体が、前記フィルタ膜の表面上に保持される、請求項1~8のいずれか一項に記載の方法。前記試料中の少なくとも99の前記生物有機体が、前記フィルタ膜の表面上に保持される、請求項1~9のいずれか一項に記載の方法。前記試料中の少なくとも99.5の前記生物有機体が、前記フィルタ膜の表面上に保持される、請求項1~10のいずれか一項に記載の方法。前記少なくとも1つの生物有機体が、前記フィルタ膜の表面上の原位置で検出される、請求項1~11のいずれか一項に記載の方法。前記フィルタ膜の表面上に保持される前記少なくとも1つの生物有機体を検出する工程が、検出アッセイを実施する前に、前記保持された生物有機体を前記膜の表面から溶出する工程を含む、請求項1~11のいずれか一項に記載の方法。少なくとも50の前記保持された生物有機体が、前記フィルタ膜の表面から溶出される、請求項13に記載の方法。少なくとも90の前記保持された生物有機体が、前記フィルタ膜の表面から溶出される、請求項14に記載の方法。前記少なくとも1つの生物有機体を検出する工程が、次の前記生物有機体を、前記生物有機体に特異的に結合する抗体組成物と接触させる工程、前記生物有機体の酵素活性を検出する工程、前記生物有機体の生物分析物を検出する工程、前記生物有機体によって生成される生物分析物を検出した後、前記生物有機体から核酸の一部を検出する工程、前記生物有機体からの核酸分子の少なくとも一部を増幅する工程、前記生物有機体のヌクレオチド配列を検出する工程のうちの少なくとも1つを含む、請求項1~15のいずれか一項に記載の方法。前記フィルタ膜が、ポリオレフィン多孔質膜、エチレン-クロロトリフルオロエチレンコポリマー多孔質膜、ポリアクリロニトリル多孔質膜、ポリカーボネート多孔質膜、ポリエステル多孔質膜、セルロースエステル多孔質膜、ポリアミド多孔質膜、ポリエーテルスルホン多孔質膜、ポリスルホン多孔質膜、ポリフッ化ビニリデンPVDF多孔質膜、ポリアクリロニトリルナノファイバ膜、PVDFナノファイバ膜、セルロースエステルナノファイバ膜、ポリ酢酸ビニル若しくはアルコールナノファイバ膜、又はポリビニルブチラールナノファイバ膜を含む、請求項1~16のいずれか一項に記載の方法。前記フィルタ膜が、TIPS膜又はナノファイバ膜を含む、請求項1~17のいずれか一項に記載の方法。少なくとも100mLの前記試料が、前記フィルタ膜を通過する、請求項1~18のいずれか一項に記載の方法。少なくとも1リットルの前記試料が、前記フィルタ膜を通過する、請求項1~19のいずれか一項に記載の方法。少なくとも10リットルの前記試料が、前記フィルタ膜を通過する、請求項1~20のいずれか一項に記載の方法。前記フィルタ膜の表面から回収される前記生物有機体を定量化するために、アッセイを実施する工程を更に含む、請求項1~11及び13~21のいずれか一項に記載の方法。前記試料が、環境試料を含む、請求項1~22のいずれか一項に記載の方法。前記試料が、水試料を含む、請求項1~22のいずれか一項に記載の方法。前記少なくとも1つの生物有機体が、前記試料が前記フィルタ膜を通過した後、24時間以内に検出される、請求項1~24のいずれか一項に記載の方法。前記少なくとも1つの生物有機体が、前記試料が前記フィルタ膜を通過した後、12時間以内に検出される、請求項25に記載の方法。前記少なくとも1つの生物有機体が、前記試料が前記フィルタ膜を通過した後、3時間以内に検出される、請求項25に記載の方法。前記少なくとも1つの生物有機体が、前記試料が前記フィルタ膜を通過した後、2時間以内に検出される、請求項25に記載の方法。前記少なくとも1つの生物有機体が、前記試料が前記フィルタ膜を通過した後、1時間以内に検出される、請求項25に記載の方法。前記少なくとも1つの生物有機体が、前記試料が前記フィルタ膜を通過した後、30分以内に検出される、請求項25に記載の方法。デバイスであって、膜を備えるフィルタホルダと、既知量の試料を流すように、前記フィルタホルダに取り付けられるフロート弁と、を備える、デバイスを提供する工程を更に含み、少なくとも1つの生物有機体を含む試料にフィルタ膜を通過させる工程が、前記フィルタホルダを試料源に取り付ける工程と、既知量の試料が前記フィルタ膜を通って流れることを可能にする工程と、を含む、請求項1~30のいずれか一項に記載の方法。デバイスであって、膜を備えるフィルタホルダと、既知量の試料を流すために、前記フィルタホルダに取り付けられる流量計と、を備える、デバイスを提供する工程を更に含み、少なくとも1つの生物有機体を含む試料にフィルタ膜を通過させる工程が、前記フィルタホルダを試料源に取り付ける工程と、既知量の試料が前記フィルタ膜を通って流れることを可能にする工程と、を含む、請求項1~31のいずれか一項に記載の方法。本発明は、液体試料を濾過する工程を伴う方法を提供する。一般に、本方法は、少なくとも100L/m2.h.psi14.5L/m2.h.kPaの水量流動率で、少なくとも1つの生物有機体を含む試料にフィルタ膜を通過させる工程であって、フィルタ膜は、1.0μmを超えないバブルポイント孔径を備え、それによって、膜の表面上に少なくとも1つの生物有機体を保持する、工程と、フィルタ膜の表面上に保持される、少なくとも1つの生物有機体を検出する工程と、を含む。特定の実施形態では、試料にフィルタ膜を通過させる工程は、膜を通して液体試料を引き込むために、真空等の機械力を提供する工程を含む。特定の実施形態では、生物有機体は、フィルタ膜上の原位置で検出され得、一方、他の実施形態では、生物有機体は、検出される前にフィルタ膜から除去され得る。よって、一部の実施形態では、方法は、フィルタ膜から保持された生物有機体を溶出する工程を含む。一部の実施形態では、方法は、生物有機体の少なくとも1つを定量化する工程を更に含むことができる。一部の実施形態では、液体試料は、例えば、水試料、環境試料、又は食品試料を含むことができる。一部の実施形態では、方法は、試料がフィルタ膜を通過した後、24時間以内に生物有機体を検出及び/又は定量化する工程を含むことができる。上記の本発明の概要は、本発明が開示する各実施形態又はあらゆる実施例を説明することを意図したものではない。以下の説明は、実例となる実施形態をより詳細に例示するものである。本明細書にわたっていくつかの箇所で、実施例の一覧を通してガイダンスを提供するが、実施例は様々な組み合せにおいて使用できる。それぞれの場合において記載される一覧はあくまで代表的な群として与えられるものであって、排他的な羅列として解釈されるべきものではない。我々は、本明細書において、液体試料が1つ以上の生物有機体の存在について分析され得る方法を説明する。本方法が実践される具体的な内容により、本方法は、比較的高い水量流動率を提供しながらも、液体試料に1.0μmを超えないバブルポイント孔径を有する膜を通過させる工程を伴うことができる。任意に、本方法は、比較的高い割合の試料の生物有機体が、膜の細孔に埋め込まれるよりもむしろ膜の表面上に保持される工程を更に提供することができる。よって、一部の実施形態では、本方法は、膜の表面上に保持される比較的高い割合の試料の生物有機体が、膜表面から容易に回収され得る工程を更に提供する。以下の用語は、示される意味を有するものとする。能動的とは、機械化力例えば真空がフィルタ膜を通る液体試料の移動を推進する濾過方法を指す。生物学的分析物とは、有機体に生じる、又はそれによって形成される分子若しくはその誘導体を指す。例えば、生物学的分析物としては、アミノ酸、核酸、ポリペプチド、タンパク質、ポリヌクレオチド、脂質、リン脂質、糖類、多糖類のうちの少なくとも1つ、又はその2つ以上のいずれかの組み合わせが挙げられるが、これらに限定されない。生物学的分析物の代表的な例としては、代謝産物例えばブドウ球菌エンテロトキシン、アレルゲン例えばピーナッツアレルゲン、ホルモン、毒素例えばバチルス属下痢毒素、アフラトキシン等、RNA例えば、mRNA、全RNA、tRNA等、DNA例えばプラスミドDNA、植物DNA等、タグ付きタンパク質、抗体、抗原、又はその2つ以上のいずれかの組み合わせが挙げられるが、これらに限定されない。バブルポイント孔径とは、算出された膜の平均孔径を指す。バブルポイント孔径は、液体が表面張力及び毛管力によってフィルタの細孔に維持される事実に基づく。表面張力を上回り、液体を細孔の外に押し出すために必要な最小圧力は、細孔直径の寸法である。バブルポイント孔径を算出するための式は、であり、式中、P=バブルポイント圧力、σ=液体の表面張力水において72ダイン/cm、θ=液体-固体接触角度水は一般的にゼロと想定される、及びD=細孔の直径である。溶出及びその変形は、例えば、重力、手動振盪、又は渦動等の低緊縮度の物理的方法を使用して、生物有機体をフィルタ膜から除去する工程を指す。閉じ込められたとは、例えば、生物有機体が膜内の空間に捕獲されるため、フィルタ膜から容易に溶出しないフィルタ膜によって捕獲された生物有機体を指す。受動的とは、機械化力例えば、真空がフィルタ膜を通る液体試料の移動を推進しない濾過を指す。受動的濾過法は、例えば、液体のフィルタ膜を通しての移動を推進するために、重力及び/又は吸収剤による液体の吸収を使用した濾過を含む。回収されるとは、検出及び/又は更なる分析のための条件下において、フィルタ膜から溶出される生物有機体を指す。保持される及びその変形は、濾過後にフィルタ膜表面に配置され、フィルタ膜から容易に溶出される生物有機体を指す。水量流動率とは、圧力単位当りの単位時間につき膜の単位領域を通過する液体の体積を指す。特に記載のない限り、本明細書において、水量流動率は、平方インチの圧力キロパスカル当り1ポンドにつき1時間当り1平方メートルの膜を通過する液体試料がリットルで表されるL/m2.h.psiL/m2.h.kPa。用語及び/又はは、1つ若しくは全ての列挙した要素、又は2つ以上の列挙した要素のいずれかの組み合わせを意味する。含むなる用語及びその変化形は、これらの用語が説明文及び特許請求の範囲において用いられている場合に限定的な意味を有するものではない。特に指定されない限り、a、an、the、及びatleastoneは、同じ意味で使用され、1つ以上を意味する。また、本明細書における端点による数の範囲の記載には、その範囲に含まれる全ての数が含まれる例えば、1~5には、1、1.5、2、2.75、3、3.80、4、5、などが含まれる。多くの市販の膜が、液体試料から生物有機体を濾別及び除去するために使用される。膜濾過の分野は周知である。しかしながら、既存の市販の膜は、典型的に、蛇行状の通路を有し、表面に大量の大きい細孔を保有する。捕獲された生物有機体がフィルタ膜の細孔に留まる可能性があり、したがって、捕獲された生物有機体を分析できるようにフィルタから無傷で除去することが困難なため、この特色は、濾別した生物有機体の回収を困難にする。よって、我々は、2つの競合するパラメータのそれぞれが満たされるようにフィルタ膜を使用して液体試料が濾過され得る方法を説明する。第1に、本方法は、保持された生物有機体が更なる分析のために膜から容易に溶出されるように、フィルタ膜の表面上に生物有機体を保持する工程を伴う。しかしながら、高い割合の生物有機体を捕獲するように設計された既存の方法は、非常に小さい平均孔径を有する膜を使用することによってそれを行う。これは、必ずしも水流動量を制限しないが、その結果として、液体試料の所与の量が処理され得る速度を制限する。したがって、本明細書に記載される方法は、濾過方法において現在観察されるより大きい水流動量を更に提供する。一部の場合において、方法は、例えば、環境試験、水質試験、水処理試験、並びに/又は修理及び/若しくは復旧した水道施設管の試験に要求され得る等の、大量の液体試料例えば、数リットルの濾過を伴うことができる。例えば、修理及び/又は復旧した水道配管の水質を試験するために現在の方法を使用すると、水質が給水を復旧するのに十分であると確認するのに2~3日かかる。しかしながら、本明細書に記載される方法を使用することにより、給水を24時間以内に復旧させられるほど十分に迅速に水質を確認することが可能であり得る。他の場合において、本方法は、強化食品試料、食品加工水試料、及び/又は飲料水試料の濾過を伴うことができる。本明細書に記載される方法は、少なくとも2つの方式で、そのような試験に必要とされる時間を短縮することができる。第1に、本方法は、大量の液体試料の濾過及び分析が可能である。第2に、本方法は、それらが溶出により容易に回収されるように、相当な割合の捕獲された生物有機体のフィルタ膜の表面上への保持をもたらす。他の用途において、本方法は、少量の液体試料例えば、1リットル未満の比較的迅速な濾過を伴うことができる。これらの用途においても、比較的高い水流動量と容易な回収のためのフィルタ膜上の生物有機体の保持の組み合わせは、より迅速かつ/又は単純な液体試料の濾過を促進する。これらの用途の一部において、生物有機体は、フィルタ膜から保持された生物有機体を取り除くために、単純な重力を使用して回収され得る。他の用途において、液体試料は、大幅に濃縮される、すなわち、全液体量未満のある程度の量が、フィルタ膜を通過することができる。大きな割合の生物有機体がフィルタ膜内に閉じ込められるよりむしろフィルタ膜上に保持されるため、元の試料中の生物有機体のより大きい割合が、残りの液体量中で回収され得、それによって、更なる識別及び/又は他の分析のために生物有機体を濃縮する。一般に、本方法は、少なくとも1つの生物有機体を含む液体試料に1.0μmを超えないバブルポイント孔径を有するフィルタ膜を通過させ、それによって、少なくとも1つの生物有機体を膜の表面上に保持する工程を含む。本方法は、受動的濾過において、少なくとも10L/m2.h.psi1.4L/m2.h.kPaの水量流動率で、又は能動的濾過において、少なくとも100L/m2.h.psi14.5L/m2.h.kPaの水量流動率で試料にフィルタ膜を通過させる工程を含む。本方法は、フィルタ膜の表面上に保持される、少なくとも1つの生物有機体を検出する工程を更に含む。液体試料は、あらゆる適切な供給源から得ることができ、水試料を含むことができる。代表的な水試料としては、環境試料湖、河川、蒸気、海、池等、水道施設/水処理試料例えば、水供給管、水処理施設、水処理排出、下水等、飲料水試料例えば、ボトル詰めされた水、井戸水、又は食品試料例えば、液体食品、例えば均質化等によって加工された食品試料等が挙げられる。試料は、収集時に濾過され得るか、又は濾過及び更なる分析の前にある程度処理され得る。生物有機体は、液体試料の検出及び/又は定量化が所望され得る、あらゆる原核生物又は真核生物有機体であり得る。したがって、生物有機体は、例えば、寄生虫、又は例えば、単細胞真核生物例えば、酵母、藻類、若しくは細菌等の微生物を含むことができる。代表的な微生物は、例えば、大腸菌微生物を含む。代表的な細菌種は、例えば、エシェリキア属例えば、大腸菌、エンテロバクター属例えば、E.エロゲネス、エンテロコッカス属例えば、フェカリス菌、シトロバクター属例えば、C.フロインディーfreundii、クレブシエラ属、シゲラ属、サルモネラ属例えば、サルモネラ菌Senterica、リステリア属、シュードモナス属等を含む。本方法は、1.0μmを超えるバブルポイント孔径を有するフィルタ膜を使用して実施され得るが、フィルタ膜は、1.0μmを超えないバブルポイント孔径を保有することができる。代表的なフィルタ膜は、例えば、0.95μmを超えない、0.9μmを超えない、0.85μmを超えない、0.8μmを超えない、0.75μmを超えない、0.7μmを超えない、0.6μmを超えない、0.5μmを超えないバブルポイント孔径を有することができる。適切なバブルポイント孔径は、少なくともある程度は、例えば、検出が所望される生物有機体のサイズ、濾過される試料の体積、及びフィルタ膜の細孔の深度により決定され得る。多重ゾーン膜に関して、バブルポイント孔径は、生物有機体を保持するように位置付けられたゾーンについて測定される。代表的なフィルタ膜は、例えば、TIPS熱的に誘発された相分離プロセス、SIPS溶媒誘発された相分離プロセス、VIPS気体誘発された相分離プロセス、伸展プロセス、飛跡エッチング、又は電界紡糸例えば、PAN繊維膜により作製され得る。適切な膜材料は、例えば、ポリオレフィン例えば、ポリエチレン及び/又はポリプロピレン、エチレン-クロロトリフルオロエチレンコポリマー、ポリアクリロニトリル、ポリカーボネート、ポリエステル、ポリアミド、ポリスルホン、ポリエーテルスルホン、ポリフッ化ビニリデンPVDF、セルロースエステル、及び/又はそれらの組み合わせを含む。適切な膜は、多孔質膜又はナノファイバ膜として特徴付けされ得る。ナノファイバフィルタ膜は、例えば、1μm未満等の、5μm未満の繊維直径を有することができる。ナノファイバ膜は、例えば、ポリアクリロニトリル、ポリフッ化ビニリデン、セルロースエステル、ポリ酢酸ビニル、ポリビニルアルコール、ポリビニルブチラール、及び/又はそれらの組み合わせから調製され得る。特定のTIPSポリオレフィン膜は、それらが、各ゾーンが異なる細孔微細構造を有する、単一の均質化ゾーンの膜構造を保有するように調製され得る。他の場合において、TIPS膜は、各ゾーンが異なる細孔微細構造を有する、2つ以上のゾーンを含む多重ゾーン膜として調製され得る。多重ゾーンTIPS膜は、別々のゾーンを含有することができるか、又は代替的に、2つの他の別々のゾーンの間に移行ゾーンを保有することができる。代表的なフィルタ膜は、膜を含み、代表的なフィルタ膜を作製するための方法は、例えば、米国特許第4,539,256号、米国特許第4,726,989号、米国特許第4,867,881号、米国特許第5,120,594号、米国特許第5,260,360号、国際特許出願第PCT/US2009/069565号、国際特許出願第PCT/US2009/067807号、2010年6月4日に出願された、CoatedPorousMaterialsという表題の米国仮特許出願第61/351,441号、及び2010年6月4日に出願された、ProcessforMakingCoatedPorousMaterialsという表題の米国仮特許出願第61/351,447号に記載されている。一部の場合において、本方法は、100L/m2.h.psi14.5L/m2.h.kPa未満の水流動量で実施され得るが、能動的濾過は、少なくとも100L/m2.h.psi14.5L/m2.h.kPaの水流動量を提供することができる。能動的濾過を使用する代表的な水流動量値は、例えば、少なくとも250L/m2.h.psi36.2L/m2.h.kPa、少なくとも500L/m2.h.psi72.5L/m2.h.kPa、少なくとも750L/m2.h.psi108.7L/m2.h.kPa、少なくとも1000L/m2.h.psi144.9L/m2.h.kPa、少なくとも1250L/m2.h.psi181.2L/m2.h.kPa、少なくとも1500L/m2.h.psi217.4L/m2.h.kPa、少なくとも1750L/m2.h.psi253.6L/m2.h.kPa、少なくとも2000L/m2.h.psi289.9L/m2.h.kPa、少なくとも2500L/m2.h.psi362.3L/m2.h.kPa、又は少なくとも3000L/m2.h.psi434.8L/m2.h.kPaを含む。最大水流動速度は、少なくともある程度は、フィルタ膜を通る液体試料の移動を推進するために使用される機械化力の最大能力、フィルタ膜の強度及び/又は耐久性、並びにフィルタ膜のバブルポイント孔径によって決定され得る。一部の場合において、本発明は、10L/m2.h.psi1.4L/m2.h.kPa未満の水流動量で実施され得るが、受動的濾過は、少なくとも10L/m2.h.psi1.4L/m2.h.kPaの水流動量を提供することができる。能動的濾過を使用する代表的な水流動量値は、例えば、少なくとも10L/m2.h.psi1.4L/m2.h.kPa、少なくとも20L/m2.h.psi2.9L/m2.h.kPa、少なくとも25L/m2.h.psi3.6L/m2.h.kPa、少なくとも32L/m2.h.psi4.6L/m2.h.kPa、少なくとも50L/m2.h.psi7.2L/m2.h.kPa、少なくとも60L/m2.h.psi8.7L/m2.h.kPa、少なくとも75L/m2.h.psi10.9L/m2.h.kPa、少なくとも88L/m2.h.psi12.8L/m2.h.kPa、少なくとも95L/m2.h.psi13.8L/m2.h.kPa、又は少なくとも100L/m2.h.psi14.5L/m2.h.kPaを含む。最大受動的水流動速度は、少なくともある程度は、フィルタ膜のバブルポイント孔径、及び/又はフィルタ膜を通して液体試料の少なくとも一部を引き込むことができるように、例えばフィルタ膜と流通連体に位置付けられる吸収材料によって生成される流動勾配によって決定され得る。一部の実施形態では、本方法は、試料中の30を下回る生物有機体がフィルタ膜によって保持されるように実践され得るが、本方法は、フィルタ膜によって試料中の少なくとも30の生物有機体の保持をもたらす。代表的な方法において、試料中の少なくとも40、少なくとも45、少なくとも50、少なくとも55、少なくとも60、少なくとも65、少なくとも70、少なくとも75、少なくとも76、少なくとも77、少なくとも78、少なくとも79、少なくとも80、少なくとも81、少なくとも82、少なくとも83、少なくとも84、少なくとも85、少なくとも86、少なくとも87、少なくとも88、少なくとも89、少なくとも90、少なくとも91、少なくとも92、少なくとも93、少なくとも94、少なくとも95、少なくとも96、少なくとも97、少なくとも98、少なくとも99、少なくとも97.5、少なくとも98.5、少なくとも99、少なくとも99.1、少なくとも99.2、少なくとも99.3、少なくとも99.4、少なくとも99.5、少なくとも99.6、少なくとも99.7、少なくとも99.8、少なくとも99.9の生物有機体がフィルタ膜によって保持される。本方法は、フィルタ膜によって保持される少なくとも1つの生物有機体を検出する工程を更に含む。これに関して、フィルタ膜によって保持される生物有機体は、フィルタ膜と接触する生物有機体並びにフィルタ膜から結果として回収される生物有機体を含む。生物有機体は、あらゆる適切な方法によってフィルタ膜から回収され得る。本明細書に記載される方法を実践することによってフィルタ膜上に保持される生物有機体の特色の1つは、保持された生物有機体が、例えば、重力、手動振盪、及び/又は渦動等の比較的低緊縮度の物理的方法を使用して、フィルタ膜から除去され得ることである。よって、一部の実施形態では、保持された生物有機体は、フィルタ膜と接触している間でも、原位置で検出され得る。しかしながら、他の実施形態では、保持された生物有機体は、フィルタ膜から除去され得、そのように回収された生物有機体が検出され得る。原位置で、又はフィルタ膜から回収された後に検出されるかどうかに関わらず、生物有機体は、微生物検出の分野の者にとってなじみのあるものを含む、あらゆる適切な方法を使用して検出され得る。適切な原位置検出法は、例えば、抗体組成物例えば、モノクローナル抗体又はポリクローナル抗体の生物有機体特異的結合の検出を含む。他の検出法は、例えば、生物有機体によって生成された生物学的分析物の存在の検出を含むことができる。代表的な検出法は、増幅例えばPCRにより生物有機体特異的ヌクレオチド配列の検出、ヌクレオチド配列決定、酵素アッセイ例えば、デヒドロゲナーゼ、グルクロニダーゼ、β-ガラクトシダーゼ、プロテアーゼ等の検出、生物発光アッセイ例えば、ATP/ADP/AMPの検出、タンパク質/ペプチドの検出、分光法、及び/又は蛍光例えば、NAD/NADH、FAD/FADH、自己蛍光の検出等を含むが、これらに限定されない。フィルタ膜から回収された生物有機体の適切な検出法は、生物有機体の原位置検出に適切な方法を含み、培養物における成長の検出を更に含む。一部の場合において、本方法は、フィルタ膜によって保持される生物有機体の定量化を更に含むことができる。これに関しても、フィルタ膜によって保持される生物有機体は、フィルタ膜と接触する生物有機体並びにフィルタ膜から結果として回収される生物有機体を含む。よって、一部の実施形態では、保持された生物有機体は、フィルタ膜と接触している間でも、原位置で定量化され得る。しかしながら、他の実施形態では、保持された生物有機体は、フィルタ膜から除去され得、そのように回収された生物有機体が定量化され得る。原位置で、又はフィルタ膜から回収された後に定量化されるかどうかに関わらず、生物有機体は、例えば、コロニー形成単位cfu検出、最確数MPN分析、ATP生物発光、酵素アッセイ、PCR、逆転写酵素PCRRT-PCR、定量的PCR等の、微生物検出の分野の者にとってなじみのあるものを含む、あらゆる適切な方法を使用して定量化され得る。生物有機体がフィルタ膜から回収された後に検出及び/又は定量化される実施形態では、方法は、保持された生物有機体の50未満をフィルタ膜から溶出した後に実施され得るが、方法は、保持された生物有機体の少なくとも50をフィルタ膜から溶出する工程を含む。代表的な方法において、保持された生物有機体の少なくとも50、少なくとも55、少なくとも60、少なくとも65、少なくとも70、少なくとも75、少なくとも76、少なくとも77、少なくとも78、少なくとも79、少なくとも80、少なくとも81、少なくとも82、少なくとも83、少なくとも84、少なくとも85、少なくとも86、少なくとも87、少なくとも88、少なくとも89、少なくとも90、少なくとも91、少なくとも92、少なくとも93、少なくとも94、少なくとも95、少なくとも96、少なくとも97、少なくとも98、少なくとも99、少なくとも97.5、少なくとも98.5、少なくとも99、少なくとも99.1、少なくとも99.2、少なくとも99.3、少なくとも99.4、少なくとも99.5、少なくとも99.6、少なくとも99.7、少なくとも99.8、少なくとも99.9がフィルタ膜から溶出される。一部の場合において、保持された生物有機体は、重力により保持された生物有機体を取り除き、それによってフィルタ膜から溶出するようにフィルタ膜を再位置付けすることによって溶出される。他の場合において、保持された生物有機体は、フィルタ膜を手動で振盪して保持された生物有機体をフィルタ膜から取り除くことにより、フィルタ膜から溶出され得る。他の場合において、保持された生物有機体は、フィルタ膜を渦動させ、保持された生物有機体をフィルタ膜から取り除くことにより溶出され得る。他の場合において、生物有機体は、以下の実施例12に記載される気泡溶出によって、フィルタ膜から溶出され得る。特定の既存の方法は、生物有機体例えば、細菌の最大約30の回収を提供し、したがって、本明細書に記載される方法を使用して観察されるものと同程度の回収を提供するものではない。いかなる特定の理論により拘束されることを望まないが、特定の既存の方法は、フィルタ膜が微生物のサイズより小さい細孔等級を有する時でも、微細孔フィルタ膜は、膜の表面に大量の大きい細孔を保有するため、生物有機体の十分な回収を提供するものではない場合がある。大きい細孔は、試料体積を減少させる一方で、生物有機体を保持するよりむしろ生物有機体を閉じ込めると考えられる。一部の実施形態では、本方法は、より少ない体積の流体にフィルタ膜を通過させることにより実践され得るが、本方法は、少なくとも1リットルの流体にフィルタ膜を通過させる工程を含むことができる。よって、例えば、特定の実施形態では、本方法は、少なくとも1リットル、少なくとも2リットル、少なくとも5リットル、少なくとも10リットル、少なくとも15リットル、少なくとも20リットル、少なくとも50リットル、又は少なくとも100リットルの流体にフィルタ膜を通過させる工程を含むことができる。一部の実施形態では、本方法は、試料がフィルタ膜を通過した後24時間を超えても、試料中の少なくとも1つの生物有機体の検出及び/又は定量化を可能であるように実践され得るが、本方法は、試料がフィルタ膜を通過した後24時間以内に、試料から少なくとも1つの生物有機体を検出及び/又は定量化する工程を伴う。代表的な実施形態では、少なくとも1つの生物有機体は、試料がフィルタ膜を通過した後22時間以内、20時間以内、18時間以内、15時間以内、12時間以内、10時間以内、9時間以内、8時間以内、7時間以内、6時間以内、5時間以内、4時間以内、3時間以内、2時間以内、1時間以内、若しくは30分以内に検出及び/又は定量化され得る。一実施形態では、例えば、流体試料は、修理した水道施設管から取得され得る。再開前に、地域条例は、例えば大腸菌等の指標微生物について水道管が試験されることを求める場合がある。現在の試験は、液体試料を取得し、試験指標を添加し、その後、試料を24時間インキュベートし、試料中のいずれかの微生物を、その微生物が検出され得るレベルに成長させる工程を伴う。逆に、本方法は、例えば、体積が1ガロン3.8リットルの試料を取得し、例えば30分にわたり液体試料を真空濾過する工程を伴うことができる。次いで、フィルタ膜上に保持された細菌を回収し、例えば3時間にわたって核酸増幅検出法を実施することができる。よって、水道管を回復させられる状態であることを示す結果は、数時間で達成され得、それによって、水道施設の稼働が遮断されることに関連する不便の程度を減少する。よって、本明細書に記載される方法は、同日試験及び稼働システムへの復帰の一部として実践される。一般に、代表的な方法は、例えば、使用されていない水道管からの水試料を収集する工程と、生物有機体の存在について水試料を試験する工程と、試験が許容限界を下回るいずれかの生物有機体が存在することを示す場合において、水道管を稼働状態に復帰させる工程とを含む。特定の一実施例において、大腸菌を含む水試料が濾過され、保持された大腸菌が膜から回収され得る。回収された細菌は、平板培養並びにPCRによって検出された。SPAN20改質多重ゾーンポリプロピレン熱誘発相分離TIPS膜及びナノファイバポリアクリロニトリルPANフィルタの使用により、我々は、単純な溶出により60~70の添加した大腸菌を回収することができた。加えて、濾過後、膜上の細菌を短時間1~2時間成長させることにより、我々は、実施例13~15に示されるように、PCRを使用して、約3時間で、添加した水試料から10cfuの大腸菌を検出することができた。本明細書に開示される、別個の工程を含む任意の方法において、任意の可能な順序で工程を実施してもよい。更に、2つ以上の工程の任意の組み合わせを適宜同時に実施してもよい。本発明を以下の実施例によって例示する。特定の実施例、物質、量及び手順が本明細書で記載された本発明の範囲及び趣旨により広く解釈されるべきであることが理解されるべきである。実施例1TIPS膜の調製R1901-11膜多重ゾーン微細孔ポリプロピレン膜本明細書においてR1901-11と称されるは、40mm二軸押出機及び25mm二軸押出機の両方を使用して、国際特許出願第PCT/US2009/069565号に記載されるように調製された。2つの押出機からの溶融物流は、多重マニホールドダイを通して単一シートに流し込まれた。溶融物流1.ポリプロピレンPP樹脂ペレットF008F、SunocoChemicals,Philadelphia,PAから及び核形成剤MILLAD3988,MillikenChemical,Spartanburg,SCが、250rpmのスクリュー速度に維持された40mm二軸押出機に導入された。鉱物油希釈剤MineralOilSUPERLAWhite31,ChevronCorp.,SanRamon,CAが、貯蔵部から押出機の中に個別に供給された。PP/希釈剤/核形成剤の重量比は、29.25/70.7/0.05であった。総押出速度は、約30lb/時間13.6kg/時間であり、押出機の8つのゾーンは、271°C~177°Cの低下する温度プロファイルを提供するように設定された。溶融物流2.PP樹脂ペレット及びMillad3988が、125rpmのスクリュー速度に維持された25mm二軸押出機に導入された。鉱物油希釈剤が、貯蔵部から押出機の中に個別に供給された。PP/希釈剤/核形成剤の重量比は、29.14/70.7/0.16であった。総押出速度は、約6lb/時間2.72kg/時間であり、押出機の8つのゾーンは、271°C~177°Cの低下する温度プロファイルを提供するように設定された。多重ゾーンフィルムが、177°Cに維持された多重マニホールドダイからパターン形成鋳造ホイール上に流し込まれた。鋳造ホイールの温度は、60°Cに維持され、鋳造速度は、3.35m/分11ft/分であった。得られたフィルムをインラインにて溶媒中で洗浄して、フィルムの鉱物油を除去し、その後、風乾させた。洗浄したフィルムは、それぞれ、99°C及び154°Cで、1.8×2.80の長さ及び横方向に順次配向された。R1901-8B膜多重ゾーン微細孔ポリプロピレン膜本明細書においてR1901-8Bと称されるは、40mm二軸押出機及び25mm二軸押出機の両方を使用して、国際特許出願第PCT/US2009/069565号に記載されるように調製された。2つの押出機からの溶融物流は、多重マニホールドダイを通して単一シートに流し込まれた。溶融物流1.ポリプロピレンPP樹脂ペレットF008F、SunocoChemicals,Philadelphia,PAから及び核形成剤MILLAD3988,MillikenChemical,Spartanburg,SCが、250rpmのスクリュー速度に維持された40mm二軸押出機に導入された。鉱物油希釈剤MineralOilSuperlaWhite31,ChevronCorp.,SanRamon,CAが、貯蔵部から押出機の中に個別に供給された。PP/希釈剤/核形成剤の重量比は、29.254/70.7/0.045であった。総押出速度は、約27lb/時間12.2kg/時間であり、押出機の8つのゾーンは、271°C~177°Cの低下する温度プロファイルを提供するように設定された。溶融物流2.PP樹脂ペレット及びMillad3988が、125rpmのスクリュー速度に維持された25mm二軸押出機に導入された。鉱物油希釈剤が、貯蔵部から押出機の中に個別に供給された。PP/希釈剤/核形成剤の重量比は、28.146/70.7/0.154であった。総押出速度は、約9lb/時間4.08kg/時間であり、押出機の8つのゾーンは、271°C~177°Cの低下する温度プロファイルを提供するように設定された。多重ゾーンフィルムが、177°Cに維持された多重マニホールドダイからパターン形成鋳造ホイール上に流し込まれた。鋳造ホイールの温度は、60°Cに維持され、鋳造速度は、3.52m/分11.54ft/分であった。得られたフィルムをインラインにて溶媒中で洗浄して、鉱物油希釈剤を除去し、その後、風乾させた。洗浄したフィルムは、それぞれ、99°C及び154°Cで、1.6×2.85の長さ及び横方向に順次配向された。R1933-7膜多重ゾーン微細孔ポリプロピレン膜本明細書においてR1933-7と称されるは、40mm二軸押出機及び25mm二軸押出機の両方を使用して、国際特許出願第PCT/US2009/069565号に記載されるように調製された。押出機からの2つの溶融物流は、多重マニホールドダイを通して単一シートに流し込まれた。溶融物流1.ポリプロピレンPP樹脂ペレットF008F、SunocoChemicals,Philadelphia,PAから及び核形成剤MILLAD3988,MillikenChemical,Spartanburg,SCが、175rpmのスクリュー速度に維持された40mm二軸押出機に導入された。鉱物油希釈剤Kaydol350MineralOil,BrenntagGreatLakesLCC,St.Paul,MNが、貯蔵部から押出機の中に個別に供給された。PP/希釈剤/核形成剤の重量比は、34.247/65.7/0.053であった。総押出速度は、約32lb/時間14.5kg/時間であり、押出機の8つのゾーンは、271°C~177°Cの低下する温度プロファイルを提供するように設定された。溶融物流2.PP樹脂ペレット及びMillad3988が、150rpmのスクリュー速度に維持された25mm二軸押出機に導入された。鉱物油希釈剤が、貯蔵部から押出機の中に個別に供給された。PP/希釈剤/核形成剤の重量比は、29.14/70.7/0.16であった。総押出速度は、約6lb/時間2.72kg/時間であり、押出機の8つのゾーンは、254°C~177°Cの低下する温度プロファイルを提供するように設定された。多重ゾーンフィルムが、177°Cに維持された多重マニホールドダイからパターン形成鋳造ホイール上に流し込まれた。鋳造ホイールの温度は、71°Cに維持され、鋳造速度は、5.79m/分19.00ft/分であった。得られたフィルムをインラインにて溶媒中で洗浄して、鉱物油希釈剤を除去し、その後、風乾させた。洗浄したフィルムは、それぞれ、99°C及び160°Cで、1.5×2.70の長さ及び横方向に順次配向された。R1933-18膜多重ゾーン微細孔ポリプロピレン膜本明細書においてR1933-18と称されるは、40mm二軸押出機及び25mm二軸押出機の両方を使用して、国際特許出願第PCT/US2009/069565号に記載されるように調製された。押出機からの2つの溶融物流は、多重マニホールドダイを通して単一シートに流し込まれた。溶融物流1.ポリプロピレンPP樹脂ペレットF008F、SunocoChemicals,Philadelphia,PAから及び核形成剤MILLAD3988,MillikenChemical,Spartanburg,SCが、固体供給器を使用してホッパーに導入され、材料が、175rpmのスクリュー速度に維持された40mm二軸押出機に供給された。鉱物油希釈剤Kaydol350MineralOil,BrenntagGreatLakesLCC,St.Paul,MNが、貯蔵部から押出機の中に個別に供給された。PP/希釈剤/核形成剤の重量比は、34.247/65.7/0.053であった。総押出速度は、約32lb/時間14.5kg/時間であり、押出機の8つのゾーンは、271°C~177°Cの低下する温度プロファイルを提供するように設定された。溶融物流2.PP樹脂ペレット及びMillad3988が、150rpmのスクリュー速度に維持された25mm二軸押出機に導入された。鉱物油希釈剤が、貯蔵部から押出機の中に個別に供給された。PP/希釈剤/核形成剤の重量比は、28.98/70.7/0.32であった。総押出速度は、約6lb/時間2.72kg/時間であり、押出機の8つのゾーンは、260°C~194°Cの低下する温度プロファイルを提供するように設定された。多重ゾーンフィルムが、177°Cに維持された多重マニホールドダイからパターン形成鋳造ホイール上に流し込まれた。鋳造ホイールの温度は、52°Cに維持され、鋳造速度は、5.84m/分19.15ft/分であった。得られたフィルムをインラインにて溶媒中で洗浄して、鉱物油希釈剤を除去し、その後、風乾させた。洗浄したフィルムは、それぞれ、99°C及び160°Cで、1.7×2.75の長さ及び横方向に順次配向された。実施例2TIPS膜の表面コーティング界面活性剤を2-プロパノールAlfaAesar,WardHill,MAに溶解することによって、4重量のSPAN20Uniqema,NewCastle,DE溶液が調製された。TIPS微細孔膜は、上記の界面活性剤溶液を用いてポリエチレンPE袋の中で飽和された。膜は即時に飽和され、余分な表面溶液は、PE袋を擦ることによって除去された。膜は袋から取り出され、膜を完全に乾燥させるために空気に曝された。乾燥させた膜は、室温でPE袋に保管された。実施例3TIPS膜の表面改質TIPS膜は、2010年6月4日に出願された、ProcessforMakingCoatedPorousMaterialsという表題の米国仮特許出願第61/351,447号に記載されるように、ポリエチレングリコールPEGで被覆された。5重量のEVAL保存液は、70~80°Cの温度の水浴で、44モルのエチレン含量EVAL44,Sigma-AldrichCo.,StLouis,MO,USAのエチレン-ビニルアルコールコポリマーEVALをエタノールAAPERAlcoholandChemicalCo.Shelbyville,KY/水溶媒混合物70容量エタノールに溶解することによって作製された。上記の保存液から、エタノール/水混合溶媒70容量エタノール中に、1重量のEVAL44、2重量のSR610Sartomer,Warrington,PA、1重量の反応性光開始剤VAZPIA米国特許第5,506,279号に開示される、2-[4-2-ヒドロキシ-2-メチルプロパノイルフェノキシ]エチル-2-メチル-2-N-プロペノイルアミノプロパノエートを含有する溶液を作製した。TIPS微細孔膜は、厚手のPE袋中で、上記のコーティング溶液で飽和された。飽和した膜がPE袋から取り出された後、ペーパータオルで拭き取ることによって、余分な表面溶液を除去する試みがなされた。室温で10~12時間、溶媒を蒸発させることによって、膜を乾燥させた。その後、乾燥させた膜は、20重量のNaCl水性溶液で飽和された。その後、膜は、コンベヤベルト上で、H-バルブを備えた窒素不活性フュージョンUVシステムに通された。ベルトの速度は、1分間当り20フィートfpm6.1メートル/分であった。膜は、膜の反対側が光源に面する状態で、同じ速度で再びUVシステムに送られた。硬化した膜試料を、過剰な脱イオン水中で洗浄し、完全に乾燥するまで、90°Cで1~2時間乾燥させた。乾燥させた膜は、室温でPE袋に保管された。実施例4ポリアクリロニトリルPAN膜の調製韓国特許出願第KR20040040692号に開示されるように、様々なPAN膜を作製した。10.5重量のポリアクリロニトリルMw.150,000は、N,N-ジメチルアセトアミドDMAC中で調製された。シリンジポンプを使用して、一定流量のPANポリマー溶液50μL/分/穴が、高電圧電源に接続されたシリンジの中に供給された。90~100Kvの電気力を導入して、空気中にポリマー溶液を放出させ、PANナノファイバを形成するように静電気力を形成した。電界紡糸プロセス後、収集したPANナノファイバは、綿に似たかさばりを有し、フィルム及び/又は膜の様ではなかった。かさばりを減少させ、電界紡糸したPANナノファイバの構造の完全性を増加するために、後処理高温圧延プロセスが、140°C及び10~20kgf/cm398.1~196.1N/cm3圧力で実行された。PANナノファイバは、室温で、PE袋にロールとして保管された。実施例5膜の特徴付けa流水速度の測定ダイパンチを使用して47mmの膜のディスクが切り取られ、膜ディスクはGelman磁気ホルダGelmanSciences,Inc.,AnnArbor,MIに載置された。ホルダの活性膜の直径は34mmであった。100mLの水をホルダに添加し、真空ポンプGASTManufacturing,Inc.,BentonHarbor,MIを使用して、約23.5水銀インチの真空圧79.6kPaを適用し、水を膜に引き込んだ。水が膜を通過する時間は、ストップウォッチで記録された。流水速度流動率は、時間、真空圧、及び膜の面積を使用して計算され、L/m2.h.psiL/m2.h.kPaで表された。bバブルポイント孔径の測定膜のバブルポイント孔径は、ASTM-F316-03に従い測定された。イソプロパノール若しくはFC-433MCo.,StPaul,MN、又は液体galwickPMI,PorousMaterials,Inc.,Ithaca,NYを用いて、膜を予め湿潤し、試験ホルダに載置した。加圧した窒素ガスは、他方側で検出されるガス流が100に達するまで、膜の一方の側に徐々に適用された。膜を通る100の圧力のガス流が記録され、バブルポイント孔径を計算するために使用された。TIPS膜の処理条件を以下の表1に要約する。様々な膜の水流動速度及びバブルポイント孔径を以下の表2に示す。c膜の走査型電子顕微鏡検査PAN膜において、試料のそれぞれからのフィルタがアルミニウム片上に載置された。TIPS膜において、密接表面及び開放表面の両方を観察するために、試料のそれぞれからの2つの切片が取り出され、アルミニウム片上に載置された。TIPS膜のそれぞれの断面も、液体窒素下で引裂することにより調製された。それらは、追加の片上に載置された。全ての試験片は、金/パラジウムでスパッタ被覆され、JEOL7001F電界放射型走査電子顕微鏡を使用して検査された。デジタル顕微鏡写真は、試料の表面形態を撮像するために使用される技法である、二次電子撮像SEIの産物であった。全ての顕微鏡写真は、片の表面又は切片面に垂直である視野角公称で撮られた。画像は、様々な倍率で撮像され、倍率は、示される画像上に表示される。密接表面及び開放表面側面又はゾーンとも称されるは、各断面の画像に表示される。長さの標識も、図1~6の各顕微鏡写真の下部分に示される。実施例6実施例に使用された細菌実施例で使用された様々な細菌表3は、ATCCManassas,VAから入手した。菌株の純粋培養物をトリプチソイブロスTSB,BD,FranklinLakes,NJ中に播種し、37°Cで一晩成長させた。培養物は、水試料に添加するための、所望量の1mL当りのコロニー形成単位cfuを得るために、Butterfieldリン酸緩衝液Whatman,Piscataway,NJに系列的に希釈された。細菌は、製造者の指示に従い、3MPETRIFILM大腸菌/大腸菌群計数プレート3MCo.,St.Paul,MN上で適切な希釈剤を平板培養することにより定量化され、37°Cで一晩インキュベートされた。プレートは、3MPETRIFILMプレートリーダー3MCo.を使用して読み取られ、コロニー形成単位cfuが決定された。実施例7直接成長後の濾過による添加した水試料からの大腸菌の回収大腸菌を、37°Cで一晩、トリプチソイブロスTSB中で成長させた。約100cfu/mLを得るように培養物を希釈し、約100cfuを得るように1mLの溶液を1000mLの減菌水に添加した。シート又はディスクから47mmの膜を切り取り、フリット底の漏斗を備える減菌ガラスフィルタホルダアセンブリMillipore,Billerica,MA上に設置した。フィルタホルダは、4Lの真空濾過フラスコに接続された。約20水銀インチの真空圧67.7kPaで、AIRCADETVacuum/PressureStationモデル番号420-3901、BarnantCompany,Barrington,ILを使用して、様々な膜を通して溶液を濾過した。膜は無菌的に取り出され、血液寒天又はトリプチソイ寒天のプレートHardyDiagnostics,SantaMaria,CA上に設置され、37°Cで一晩インキュベートされた。膜上に成長しているコロニーを数え、コロニー形成単位cfuを決定した。得られた結果を以下の表4に示す。試験した全ての膜は、73を超える回収率を示し、より小さい孔径膜<0.5μmは、90を超える回収率を示した。実施例8濾過後の溶出による添加した水試料からの大腸菌の回収大腸菌を37°Cで一晩、TSB中で成長させた。約100cfu/mLを得るように培養物を希釈し、約100cfuを得るように1mLの溶液を1000mLの減菌水に添加した。シート又はディスクから47mmの膜を切り取り、減菌真空濾過装置上に設置した。約20水銀インチの真空圧67.7kPaで、AIRCADETVacuum/PressureStationを使用して、様々な膜を通して溶液を濾過した。膜は、減菌的に取り出され、5mLの0.2Tween-20Sigma-AldrichCo.,St.Louis,MOが入った減菌ポリスチレン50-mL遠心管BDBiosciences,SanJose,CAに添加され、室温で1~2分間渦動FixedSpeedVortexMixer,VWR,WestChester,PAされた。溶液は、製造者の指示に従い、3MPETRIFILM大腸菌/大腸菌群計数プレート3MCo.,St.Paul,MN上で平板培養され、37°Cで一晩インキュベートされた。プレートは、3MPETRIFILMプレートリーダー3MCo.を使用して読み取られ、コロニー形成単位cfuが決定された。得られた結果を以下の表5に示す。結果は、典型的な実験を表す。約100cfuの大腸菌を添加した1000mLの水試料からの回収率は、28.6~72.9の範囲であった。処理されたTIPS膜及び1つのPAN膜PAN-3において、回収率は、45から72.9まで変動した。TIPS膜のR1933-18/SPAN0.2μmは、1リットルの水を濾過するのに25分かかるほど流動速度が低かった。R1933-7/SPAN0.34μmは、流動速度は良好であった。両方の膜とも、濾過された細菌の良好な回収率を示した。2つの市販の膜において、回収率は、28.6~35.7の範囲であった。実施例9濾過後の溶出による添加した水試料からの細菌の回収に対する様々な抽出剤の効果大腸菌を37°Cで一晩、TSB中で成長させた。約100cfu/mLを得るように培養物を希釈し、約100cfuを得るように1mLの溶液を1000mLの減菌水に添加した。シート又はディスクから47mmの膜を切り取り、真空濾過装置上に設置した。約20水銀インチの真空圧67.7kPaで、AIRCADETVacuum/PressureStationを使用して、様々な膜を通して溶液を濾過した。膜は、減菌的に取り出され、5mLの様々な抽出剤が入った減菌ポリスチレン50-mL遠心管BDBiosciences,SanJose,CAに添加され、室温で1~2分間渦動FixedSpeedVortexMixer,R,WestChester,PAされた。溶液は、製造者の指示に従い、3MPetrifilm大腸菌/大腸菌群計数プレート上で平板培養され、37°Cで一晩インキュベートされた。プレートは、3MPetrifilmプレートリーダーを使用して読み取られ、コロニー形成単位cfuが決定された。得られた結果を以下の表6に示す。0.2Tween-20及びリン酸緩衝食塩水PBS,Invitrogen,Carlsbad,CAの使用は、Triton-X-100Sigma-AldrichCo.,St.Louis,MO又は水より良好な回収率を示した。Tween-20を用いた回収率は、35~77の範囲であり、一方、PBSを用いた回収率は、33~79であった。減菌MILLI-Q水MilliporeCorp.,Billerica,MA及びTrition-X-100を用いた回収率は、わずか11~46であった。実施例10細菌の回収に対するTween-20濃度の効果大腸菌を37°Cで一晩、TSB中で成長させた。約100cfu/mLを得るように培養物を希釈し、約100cfuを得るように1mLの溶液を1000mLの減菌水に添加した。シート又はディスクから47mmの膜を切り取り、真空濾過装置上に設置した。約20水銀インチの真空圧67.7kPaで、AIRCADETVacuum/PressureStationを使用して、様々な膜を通して溶液を濾過した。膜は、減菌的に取り出され、5mLの様々な濃度のTween-20が入った減菌ポリスチレン50-mL遠心管BDBiosciences,SanJose,CAに添加され、室温で1~2分間渦動FixedSpeedVortexMixer,VWR,WestChester,PAされた。溶液は、製造者の指示に従い、3MPetrifilm大腸菌/大腸菌群計数プレート上で平板培養され、37°Cで一晩インキュベートされた。プレートは、3MPetrifilmプレートリーダーを使用して読み取られ、コロニー形成単位cfuが決定された。得られた結果を以下の表7に示す。0.1又は0.2のTween-20の使用が、試験された膜の全てにおいて最高の回収率をもたらした。実施例11膜からの細菌の回収における様々な方法の効果大腸菌を37°Cで一晩、TSB中で成長させた。約100cfu/mLを得るように培養物を希釈し、約100cfuを得るように1mLの溶液を1000mLの減菌水に添加した。シート又はディスクから47mmの膜を切り取り、真空濾過装置上に設置した。約20水銀インチの真空圧67.7kPaで、AIRCADETVacuum/PressureStationを使用して、様々な膜を通して溶液を濾過した。膜は、減菌的に取り出され、5mLの0.2Tween-20が入った減菌ポリスチレン50-mL遠心管BDBiosciences,SanJose,CAに添加された。超音波処理器Branson2200,BransonUltrasonics,Dansbury,CTを使用して、5分間、管を音波処理し、室温で、1~2分間渦動FixedSpeedVortexMixer,VWR,WestChester,PAされるか、又は10分間、振盪機NewbrunswikScientificshaker,ModelInnova4000で振盪された。溶液は、製造者の指示に従い、3MPETRIFILM大腸菌/大腸菌群計数プレート上で平板培養され、37°Cで一晩インキュベートされた。プレートは、3MPETRIFILMプレートリーダーを使用して読み取られ、コロニー形成単位cfuが決定された。得られた結果を以下の表8に示す。実施例12気泡溶出を使用した膜からの細菌の回収大腸菌を37°Cで一晩、TSB中で成長させた。約100cfu/mLを得るように培養物を希釈し、約100cfuを得るように1mLの溶液を50mLの減菌水に添加した。シート又はディスクから25mmの膜を切り取り、25mmSwinnexフィルタホルダMilliporeCorp.,Billerica,MAに設置した。フィルタホルダを真空マニホールドWatersCorporation,Milford,MAに取り付け、50mLシリンジをフィルタホルダの他の端に取り付けた。約20水銀インチの真空圧67.7kPaで、AIRCADETVacuum/PressureStationを使用して、様々な膜を通して添加した水試料を濾過した。膜を備えたフィルタホルダをHSC40卓上型濃縮機InnovaPrep,Drexel,MOに取り付けた。システムは、抽出剤溶液の気泡を生成し、気泡1mLの0.05Tween-20に膜を通過させることによって、細菌が溶出された。抽出された溶液は、製造者の指示に従い、3MPETRIFILM大腸菌/大腸菌群計数プレート上で平板培養され、37°Cで一晩インキュベートされた。プレートは、3MPETRIFILMプレートリーダーを使用して読み取られ、コロニー形成単位cfuが決定された。得られた結果を以下の表9に示す。気泡溶出法は、少量で生物有機体を溶出する利点を提供し、溶出した材料を更に濃縮することなく容易に核酸を抽出することができる。実施例13添加した水試料からの細菌の回収後の成長大腸菌、サルモネラエンテリカ亜種エンテリカ、及びエンテロコッカスフェカリスを、37°Cで一晩、TSB中で成長させた。約10cfu/mLを得るように培養物を希釈し、約10cfuを得るように1mLの溶液を1000mLの減菌水に添加した。約20水銀インチの真空圧67.7kPaで、AIRCADETVacuum/PressureStationを使用して、様々な膜を通して溶液を濾過した。膜は、減菌的に取り出され、10mLのテリフィックブロスTB又はトリプチソイブロスTSBが入った減菌ポリスチレン50-mL遠心管BDBiosciences,SanJose,CAに添加され、NewbrunswikScientific振盪機のModelInnova4000で、37°Cで2時間、300rpmで攪拌された。約10cfu100μLの102cfu/mLを10mLのTBに添加することによって対照管を設定し、同様に成長させた。2時間後、管からの成長培地は、大腸菌については3MPETRIFILM大腸菌/大腸菌群計数プレート上で、そしてS.エンテリカ及びエンテロコッカスフェカリスについては生菌計数プレート上で平板培養され、37°Cで一晩インキュベートされた。プレートは、3MPETRIFILMプレートリーダーを使用して読み取られ、コロニー形成単位cfuが決定された。細胞の投入数は、増加倍率を計算するために使用された。実施例14添加した水試料からの大腸菌群の回収後の成長大腸菌、エンテロバクターエロゲネス、エンテロバクタークロアカ、シトロバクターフロインディー、及びシトロバクターブラアキイを、37°Cで一晩、TSB中で成長させた。約100cfu/mLを得るように培養物を希釈し、約40cfuを得るように0.4mLの溶液を1000mLの減菌水に添加した。約20水銀インチの真空圧67.7kPaで、AIRCADETVacuum/PressureStationを使用して、様々な膜を通して溶液を濾過した。膜は、減菌的に取り出され、10mLのテリフィックブロスTB,Sigma-AldrichCo.,St.Louis,MO又はトリプチソイブロスTSB,BDBiosciences,SanJose,CAが入った減菌ポリスチレン50-mL遠心管BDBiosciences,SanJose,CAに添加され、NewbrunswikScientific振盪機のModelInnova4000で、37°Cで2.5又は3時間、300rpmで攪拌された。約40cfu400μLの100cfu/mLを10mLのTBに添加することによって対照管を設定し、同様に成長させた。インキュベーション期間後、管からの成長培地は、3MPETRIFILM大腸菌/大腸菌群計数プレート上で平板培養され、37°Cで一晩インキュベートされた。プレートは、3MPETRIFILMプレートリーダーを使用して読み取られ、コロニー形成単位cfuが決定された。細胞の投入数は、増加倍率を計算するために使用された。実施例15PCRによる大腸菌の検出のためのプライマー及びプローブの開発uidAb-グルクロニダーゼをコードする及びtufAタンパク質鎖伸長因子EF-Tuをコードするの2つの大腸菌遺伝子を標的遺伝子として選択した。PCRプライマー及びプローブは、GenBankで入手可能な全ての配列のアライメントに基づき設計された。設計されたプライマーは、uidA:順方向プライマー5’-TCTACTTTACTGGCTTTGGTCG-3’配列番号1逆方向プライマー5’-CGTAAGGGTAATGCGAGGTAC-3’配列番号2プローブ5’-6-FAM-AGGATTCGATAACGTGCTGATGGTGC-3’-IowablackFQ配列番号3tufA:順方向プライマー:5’-TCACCATCAACACTTCTCACG-3’配列番号4逆方向プライマー:5’-CAGCAACTACCAGGATCGC-3’配列番号5プローブ:5’-6-FAM-TGAATACGACACCCCGACCCG-3’-IowablackFQ配列番号6であった。プライマー及びプローブは、IDTDNATechnologies,Coralville,IAによって合成された。設計されたプライマーは250~500nMで、プローブは125~250nMで、10μLの2×TaqManFastUniversalMasterMixAppliedBiosystems,FosterCity,CA及び5μLのDNAテンプレートを用いて、使用された。加えて、PrimerDesignLtd,Southampton,UK大腸菌の定量化の標準キット及びBioGx,Birmingham,Alabama大腸菌種Scorpionsからの大腸菌の検出のために市販の試薬が、製造者の指示に従い使用された。大腸菌細胞は、Butterfieldリン酸緩衝液に系列的に希釈され、DNAテンプレートは、100μLのPrepManUltra試料調製試薬AppliedBiosystemsを25μLの細菌希釈液と混合し、10分間沸騰させることにより調製された。沸騰させた懸濁液を冷却し、2分間14,000RPMで回転させ、上清を清浄な管に移行した。5μLのDNA試料を、20μLの反応ミックスプライマー、プローブ、及び酵素ミックスを含有する96ウェルPCRプレートに添加した。以下の条件を用いて、ABI7500配列検出システムを使用して、熱循環を行った:変性のために95°Cで2分間、その後、95°Cで20秒間、及び60°Cで1分間の40サイクル。以下に示すように、PCRを用いた検出の限度は、約100cfuであった。実施例16PCRによる添加した水試料からの細菌の検出大腸菌を37°Cで一晩、TSB中で成長させた。約10cfu/mLを得るように培養物を希釈し、約10cfuを得るように1mLの溶液を1000mLの減菌水に添加した。約20水銀インチの真空圧67.7kPaで、AIRCADETVacuum/PressureStationを使用して、様々な膜を通してこの溶液を濾過した。膜は、減菌的に取り出され、10mLのTBSigma-AldrichCo.,St.Louis,MOが入った50-mL管に添加され、NewBrunswikScientific振盪機のModelInnova4000で、37°Cで2時間、300rpmで攪拌された。約10cfu100uLの102cfu/mLを10mLのTBに添加することによって対照管を設定し、同様に成長させた。全ての試料は、重複して設定された。2時間後、1組の管の成長培地が、3MPETRIFILM大腸菌/大腸菌群計数プレート上で平板培養され、37°Cで一晩インキュベートされた。プレートは、3MPETRIFILMプレートリーダーを使用して読み取られ、コロニー形成単位cfuが決定された。もう一方の組の管から細胞を含有する成長培地を、5000rpmで20分間回転させ、細胞をペレット化した。DNAは、製造者の指示に従い、QiagenMiniDNA抽出キットを使用して抽出され、DNAは、10μLで溶出された。5μLの抽出したDNAは20μLのPCRアッセイミックスに添加され、PCRは、uidA遺伝子プライマー設計キットのプライマー及びプローブを用いて、上述のように行われた。濾過から後続の成長及びPCTによる検出までの全プロセスには、約4時間かかった。以下に示すように、増加倍率は、5倍~18倍まで変動した。10cfuの大腸菌を添加した1000mLの水試料から、改質されたTIPS膜は、9~18倍の増加を示し、PCRで陽性であった。市販の膜は、わずか5~6倍の増加しか示さず、標的DNAのいかなる増幅も示さなかった。実施例17ポリプロピレン膜を有する袋の調製及び評価4重量重量界面活性剤溶液は、ソルビトールモノラウレートSPAN20、Croda,NewCastleDEから入手可能を2-プロパノールAlfaAesar,WardHill,MAに溶解することにより調製された。R1930-10、R1901-11、及びR1901-8B膜表1は、それらを飽和するのに十分な界面活性剤溶液と共にポリエチレンPE袋に個別に設置された。膜は、すぐに飽和した。余分な界面活性剤溶液は、袋を擦って、溶液を袋の外に押し出すことにより除去された。膜を袋から取り出し、室温で風乾させた。処理された膜及び未処理の膜の特性は、表2に示される特性を特徴とした。密接ゾーンの厚さは、より小さい孔径を有する層のおおよその厚さを指す。乾燥させた膜は、使用するまでプラスチックの袋に保管された。膜は、図9及び図10に示される袋濃縮デバイスbagconcentrationdeviceとして構築された。各膜を含む袋は、同じ様式で構築された。8インチ20.3cm×8インチ20.3cmのZIPLOCポリエチレン袋S.C.JohnsonSon,Inc.,Racine,WIは、封止端に沿って切られ、2つに分けられた。乾燥させた膜の単一層は、3辺が5インチ12.7cmの四角側と2.7インチ6.9cmの二等辺側とを有する五角形に切られた。膜は、不織シートに面する多重ゾーン膜の開放側と同じ寸法を有するポリプロピレン不織シートTYPAR,ReemayInc,Charleston,SCの上に積み重ねられた。次いで、積重体は、四角形状がZIPLOCの封止部分に面した状態でZIPLOC袋の1つの内表面上に設置され、v字形状を形成する三角が袋の底付近に設置され、膜の密接側が袋の内表面に面した。膜の4つの端及び不織布の五角形は、五角形の5インチ12.7cm側が、開いたままの袋の上部でZIPLOC封止部分に面してパウチを形成するように、ZIPLOC袋に熱封止された。次いで、袋の対向壁に面する不織布が濃縮袋を形成するように、ZIPLOC袋の2つの側が熱封止された。3.8gの超吸収性ヒドロゲル粒子ポリアクリレート-ポリアルコールをパウチの外側の各袋に設置することにより、各袋を評価した。各試験において、1.125mLの酸化エチレン/酸化プロピレン界面活性剤であるPluronicL64PL64、BASF,MountOlive,NJから入手可能を添加することによりブロスを調製し、0.45gのウシ血清アルブミンBSA,Sigma-AldrichCo.,St.Louis,MOをQuick-EnrichTSB3MCo.,St.Paul,MNとして得た225mLの減菌トリプチソイブロスTSBに添加し、0.5のPL64及び0.2のBSAの最終濃度とした。次いで、ブロスは、約105cfuコロニー形成単位/mLのリステリアイノキュアATCC33090を含有する225μLのButterfieldリン酸緩衝液を播種された。その後、細菌ブロスは、濃縮袋膜の密接側のパウチに注がれ、約3mLの溶液がパウチに残るまで20~30分、室温で、ベンチの上に垂直に立てたままにし、吸収時間が記録された。残りの液体は、体積を測定するために、ピペットで取り除かれて15mLの目盛り付き遠心管に移行された。次いで、各濃縮された試料は、Butterfieldの緩衝液で10倍希釈され、100μLの希釈剤は、ModifiedOxfordMediumプレートHardyDiagnostics,SantaMaria,CAから入手したMOXプレート上で平板培養され、37°Cで24時間インキュベートされた。対照は、初期濃度を表す。対照試料は、評価アッセイと同様の様式で調製されたが、濃縮されなかった。個別の対照群は、各組の膜で試験された、例えば、対照1は、SPAN20処理された膜と同じ時に試験され、対照2は、PEG処理された膜と同じ時に試験された。各評価は、再び複製され、細菌濃度は、濃縮後の2つの異なる個別の計数を表す。濃縮係数は、細菌の初期濃度で最終濃度を割ったものである。SPAN20処理された膜の試験結果を表20に示す。実施例18ポリプロピレン膜を有する袋の調製及び評価5重量のエチレンビニルアルコールコポリマーの保存液は、70~80°Cの温度の水浴で、44モルのエチレン含量Sigma-AldrichCo.,StLouis,MOから製品番号414107で入手した、44エチレン含量ポリビニルアルコールコ-エチレンポリマーを有するエチレン-ビニルアルコールコポリマーEVAL44をエタノールAAPERAlcoholandChemicalCo.Shelbyville,KY/水溶媒混合物70容量エタノールに溶解することによって調製された。上記の保存液から、エタノール/水混合溶媒70容量エタノール中に、1重量のEVAL44、2重量のポリエチレングリコール600ジアクリレートSartomer,Warrington,PAから製品番号SR610で入手、1重量反応性光開始剤VAZPIA米国特許第5,506,279号に開示される、2-[4-2-ヒドロキシ-2-メチルプロパノイルフェノキシ]エチル-2-メチル-2-N-プロペノイルアミノプロパノエートを含有するポリエチレングリコールPEGコーティング溶液を作製した。微細孔膜のR1933-7及びR1933-18表1は、厚手のPE袋中で、PEGコーティング溶液で飽和され、袋から取り出された。ペーパータオルで飽和した膜の表面を拭きとることにより余分な溶液を除去した。10~12時間、室温で膜を風乾させた。次いで、乾燥させた膜を20重量のNaCl水性溶液で飽和し、余分な溶液を除去した。次いで、膜は、UV硬化システムFusionUVSystems,Inc.,Gaithersburg,MDからのH-バルブを備えたフュージョンUVシステムのコンベアベルト上に設置され、不活性窒素雰囲気チャンバ内で硬化された。ベルトの速度は、1分間当り20フィートfpm6.1メートル/分であった。膜を反転させ、膜の反対側が光源に面する状態で、同じ速度で再びUVシステムに通した。硬化した膜を、過剰な脱イオン水中で洗浄し、完全に乾燥するまで、90°Cで1~2時間乾燥させた。永久的な処理をした乾燥させた膜は、室温でPE袋に保管された。袋濃縮デバイスは、実施例17に記載するように調製された。実施例19ポリアクリロニトリル膜を有する袋の調製及び評価韓国特許出願第KR20040040692号に開示されるように、様々なポリアクリロニトリルPANポリマー膜PAN-1、PAN-2、PAN-3、PAN-4、及びPAN-5を作製した。N,N-ジメチルアセトアミドDMAC中の10.5重量のポリアクリロニトリルMW.150,000ポリマーの溶液は、ポリマーを液体に分散させることによって調製された。一定流量のPANポリマー溶液50μL/分/穴が、高電圧電源に接続されたシリンジに送られた。90~100Kvの電気力が、空気中にポリマー溶液を放出させるシリンジに導入され、電界紡糸PANナノファイバを形成した。ファイバはウェブ上に収集され、分厚いバットを形成した。かさばりを減少させ、電界紡糸したPANナノファイバの構造の完全性を増加するために、後処理が、140°C及び約10~20kgf/cm398.1~196.1N/cm3の圧力で圧延することにより実行された。他の後続の処理は使用されなかった。膜は、室温でPE袋に保管された。膜は、PAN-4、PAN-2、及びPAN-5において、それぞれ、0.2μm、0.53μm、及び0.73μmの孔径を有した。袋濃縮デバイスは、実施例17に記載するように調製された。袋は、3.9グラムのヒドロゲルが各袋に使用されたことを除き、実施例17に記載されるのと同じ手順に従い評価された。試験結果を表21に示す。実施例20ナイロン膜を有する袋の調製製品番号080ZN0.8μm及び0606SN0.6μmのナイロン膜液体フィルタは、3MPurificationInc.,Meriden,CTから入手した。袋濃縮デバイスは、実施例17に記載するように調製された。実施例21ポリカーボネート膜を有する袋の調製0.8μm及び0.6μmポリカーボネート膜フィルタは、GEOsmonicsHopkins,MNから入手した。袋濃縮デバイスは、実施例17に記載するように調製された。実施例22ポリエーテル/ポリスルホンPES膜を有する袋の調製0.8μm及び0.6μmのポリエーテル/ポリスルホンPES膜は、GEOsmosicsHopkins,MNから入手した。袋濃縮デバイスは、実施例17に記載するように調製された。実施例23膜の評価0.6μmのナイロン膜実施例20を含有する袋及び0.8μmのポリカーボネート膜実施例21を含有する袋は、4.0グラムのヒドロゲルが各袋に使用されたことを除き、実施例17に記載される手順に従い評価された。0.6μmのナイロン膜を含有する袋も、使用された界面活性剤が、PluronicL64の代わりに0.01のフルオロ界面活性剤3MNovecFC-4430,3MCo.,St.Paul,MNであったことを除き、上述のように調製されたTSBブロスを使用して評価された。試験結果を表22に示す。0.8μmのナイロン膜実施例20を含有する袋及び0.8μmのPES膜実施例22を含有する袋は、以下を除き、実施例17に記載される手順に従い評価された。各袋に使用されたヒドロゲルの量は、約4.0グラムであった。袋の内部にイソプロピルアルコールを噴霧し、袋を開いたままにし、45分間袋を紫外線光で照射することにより、袋の内部が減菌された。トリプチソイブロスは、3グラムの酵母抽出物を含む30グラムのTSBを1リットルの脱イオン水に溶解することにより調製された0.6の酵母抽出物を含有した。表23に示される2つの界面活性剤のうちの1つが、0.2w/vのPluronicL64及び0.2のTween80v/vSigma-AldrichCo.,St.Louis,MOのブロスに添加された。得られたブロス225mLは、約1×107cfu/mLのリステリアイノキュアATCC33090を含有する225μLのButterfieldの緩衝液を播種され、良く混合された。次いで、ブロスを、試料濃縮袋のパウチに注ぎ、50~90分間垂直に立てておいた。濃縮された試料を収集し、測定し、3mLに順次Butterfieldの緩衝液に10倍希釈した。次いで、各試料の1mLの第3希釈物がACPetrifilMプレート3M,Co.St.Paul,MN上で平板培養された。プレートは、37°Cで24時間インキュベートされ、コロニーが数えられた。表23は細菌の回収結果を示す。実施例24フロート弁及び容器を備えた大規模な水試料収集システム4ガロン15.1リットルのプラスチック製カーボイP/N073004,USPlasticCorporation,LimaOHを使用して、大規模な試料量収集システムを組み立てた。47mmのフィルタホルダカタログEW-06623-22,Cole-ParmerInstrumentCo.,VernonHills,ILが、適切な管継手Menards,Stillwater,MNを使用して、1/2インチ1.27cmのフロート弁HudsonValveCompany,Bakersfield,CAに取り付けられた。フロート弁は、要求量に達した時に、フロートが水の流動を停止させるために上昇するようにカーボイの開口部に嵌め付けられた。フィルタホルダを水源に取り付けることができるように、フィルタホルダの他の端部に適切な管継手が取り付けられた。47mmの膜フィルタがフィルタホルダに設置され、デバイスは水源蛇口に取り付けられた。水源を開き、水に膜を通過させた。容器が満たされたら10リットル、フロート弁が水の流動を止めた。蛇口を閉め、フィルタホルダを取り外し、膜フィルタを除去し、更なる分析のために処理した。膜は、血液寒天HardyDiagnostics,SantaMaria,CA又はトリプチソイ寒天のプレートHardyDiagnostics上に設置され、プレートは、37°Cで16~24時間インキュベートされた。コロニー形成単位を数え、10リットルの水中の細菌のレベルを決定した。実施例25流量計を備えた大規模な水試料収集システム適切な管継手Menards,Stillwater,MNを使用して、流量計カタログWU-05610-01,Cole-ParmerInstrumentCo.,VernonHills,ILを47mmのフィルタホルダカタログEW-06623-22,Cole-Parmerに取り付けることにより、大規模な試料量収集システムを組み立てた。フィルタホルダを水源に取り付けることができるように、フィルタホルダの他の端部に適切な管継手が取り付けられた。47mmの膜フィルタがフィルタホルダに設置され、デバイスは水源蛇口に取り付けられた。水源を開き、水に膜を通過させた。フィルタを通過する水の量を決定するために流量計の数値が使用され、水の流動が要求量10リットルに達した時、水の流動を手動で止めた。フィルタホルダを取り外し、膜フィルタを除去し、更なる分析のために処理した。膜は、血液寒天HardyDiagnostics,SantaMaria,CA又はトリプチソイ寒天のプレートHardyDiagnostics上に設置され、プレートは、37°Cで16~24時間インキュベートされた。コロニー形成単位を数え、10リットルの水中の細菌のレベルを決定した。実施例26管修復のプロセスの説明細菌試験のプロセスは、図7及び図8に図示される。1~10リットルの水試料は、好ましい膜フィルタを使用して処理される。保持された細菌は溶出されるか、又はPCR、等温増幅、イムノアッセイ等のアッセイによる検出のために更に成長させることができる。迅速な検出は、短時間例えば、8時間未満で細菌の存在又は不在を決定することができ、復旧した管の迅速な稼働状態への復帰を可能にする。本明細書で引用される全ての特許、特許出願、及び出版物、並びに電子的に存在する資料例えば、GenBank及びリファレンスシーケンスRefSeqなどに登録されているヌクレオチド配列寄託、並びにスイスポートSwissProt、PIR、PRF、PDBなどに登録されているアミノ酸配列寄託、並びにジェンバンク及びリファレンスシーケンスの注釈つきコード領域からの翻訳物を含むの完全な開示は、参照によりその全体が組み込まれる。本出願の開示内容と本明細書に援用されるいずれかの文書の開示内容との間になんらかの矛盾が存在する場合には、本出願の開示内容が優先するものとする。上記の詳細な説明及び実施例はあくまで理解を助けるために示したものである。これらによって不要な限定をするものと理解されるべきではない。本発明は、図示及び説明された厳密な詳細に限定されるものではなく、当業者には明らかな変形例は特許請求の範囲によって定義される本発明に含まれるものとする。特に指示がない限り、明細書及び特許請求の範囲に使用されている成分量、分子量等を表す全ての数は、全ての例において、用語約により修飾されていることを理解されたい。したがって、別途指示がない限り、本明細書及び特許請求の範囲に記載の数値パラメータは、本発明により得ることが求められる所望の性質に応じて変化し得る近似値である。最低限でも、また特許請求の範囲と等価物の原則を制限しようとするものではないが、それぞれの数値パラメータは少なくとも、報告された有効数字の数値を考慮して、通常の数値のまるめ方を適用することによって解釈されるべきである。本発明の広い範囲を示している数値範囲及びパラメータは全て近似値であるけれども、具体的な実施例を示している数値は、できる限り正確に報告されている。しかしながら、数値は全て、それぞれの試験測定値における標準偏差から必然的に生じる一定の範囲を本質的に含むものである。全ての見出しは読者の便宜のためのものであって、特に断らない限り、見出しの後に続く文面の意味を限定するために使用されるものではない。"