幹細胞特性を有する化学療法剤耐性癌細胞を単離する方法であって、iアガロースでコーティングされた、アロガース含有ビーズ内に癌細胞のサンプルをカプセル化することと、ii前記癌細胞の少なくとも一部を死滅させるのに十分な時間、前記ビーズを、少なくとも1つの抗癌化学療法剤と接触させることと、iii前記ビーズから生存細胞を除去することと、iv前記生存細胞を、少なくとも1つの幹細胞特性について分析試験することと、v前記幹細胞特性を示す細胞を、前記幹細胞特性を示さない細胞から単離することを含む方法。前記幹細胞特性はOCT4の発現である請求項1に記載の方法。前記化学療法剤はドセタキセルである請求項1に記載の方法。前記癌細胞は哺乳類細胞である請求項1に記載の方法。前記哺乳類細胞はヒト細胞である請求項4に記載の方法。少なくとも1つの幹細胞特性を示す、単離された化学療法耐性癌細胞。前記幹細胞特性はOCT4の発現である請求項6に記載の単離された化学療法耐性癌細胞。前記癌細胞は哺乳類細胞である請求項6に記載の単離された化学療法耐性癌細胞。前記哺乳類細胞はヒト細胞である請求項8に記載の単離された化学療法耐性癌細胞。前記細胞はドセタキセルに耐性を有する請求項5に記載の単離された化学療法耐性癌細胞。対象の物質が抗癌有効性を有するか否かを決定する方法であって、iアガロースを含有する、アガロースでコーティングされたビーズ内にカプセル化された癌細胞のサンプルに、前記物質を、所定濃度で所定期間接触させることと、ii前記物質によって死滅した前記癌細胞の割合を同定することと、iii前記割合を、対照薬剤によって死滅した、アガロースを含有するアガロースでコーティングされたビーズ内にカプセル化された前記細胞の割合と比較することを含み、前記物質によって死滅した割合がより高いことが前記対象に対する抗癌有効性の指標となる方法。前記癌細胞は哺乳類細胞である請求項11に記載の方法。前記哺乳類癌細胞はヒト癌細胞である請求項12に記載の方法。対象の物質が抗癌幹細胞活性を有するか否かを決定する方法であって、アガロースを含有するアガロースでコーティングされたビーズ内にカプセル化された癌幹細胞を、前記物質と接触させることと、前記物質と接触していない癌幹細胞含有ビーズに対して残存細胞数を比較することを含み、その間の差異が前記物質が抗癌幹細胞活性を有することの指標となる方法。その開示が参照により援用されるSmithetalCancRes71716724、及びSmithetalCancRes71724735に従って、RENCA細胞を含有する、アガロースでコーティングされたアガロースビーズを調製した。得られたビーズを12週間培地中で培養した。次に、ビーズのサンプルを、3つの異なる濃度のうちの1つの濃度の、1つの周知の抗癌剤に暴露した。この暴露において、これらのビーズは、この抗癌剤の周知の半減期に基づく期間、その抗癌剤の存在下で培養された。培養後、ビーズを2回洗浄し、ナイーブ培地に移した。さらに、未処理のビーズ、並びに抗癌剤を可溶化するために用いられた任意の賦形剤に暴露されたビーズを含む対照を調製した。抗癌剤に暴露した後、ビーズの組織学的検証を1週間行った。変化がないケースがある一方で、抗癌剤により細胞生存率の完全な損失に至ったケースや、中間効果があったケースもあった。結果は以下のとおりである。ドセタキセル及びパクリタキセルを用いた処理では、カプセル化された腫瘍コロニー内の細胞の全ては破壊されなかった。従って、これらの抗癌剤で処理されたビーズはさらなる研究のために選択された。低濃度のカルボプラチンまたは中濃度のビノレルビンで処理されたビーズも使用できたであろう。パクリタキセル及びドセタキセルで処理されたビーズは、これら2つの抗癌剤の送達媒体であるDMSOに暴露された対象ビーズと同様に、標準条件下で培養された。培養期間は18週間であった。DMSOで処理されたビーズ内にカプセル化された細胞は、通常の形態、すなわち内部の残屑debrisを取り囲む細胞1~2個分の厚さの細胞の周縁部からなる楕円形の腫瘍コロニーを示した。対照的に、3.5μg/mlのパクリタキセルで処理されたビーズは、6週間は細胞の損失を示し、18週までに処理前の細胞数に戻った。ドセタキセル5μg/mlで処理されたビーズは、処理後6週間で、1ビーズ当たりわずか1~2個の細胞という一貫したパターンを示した。ビーズの約10は、18週で1つまたは2つの大きなコロニーを発生した。細胞損失を定量化するため、細胞核をカウントできるように、DMSO対照、パクリタキセルグループ及びドセタキセルグループの代表ビーズを、標準的な方法で切開し、染色した。結果は、DMSOで処理されたビーズに正規化された。パクリタキセルで処理した場合、1~3週間で、1コロニーあたり約25の細胞の初期損失があった。ビーズの大半は生存細胞を含んだ。18週間後、細胞数は増加し、対照のDMSOビーズと同等になった。ドセタキセルで処理されたビーズの場合、生存細胞は非常に急激に失われ、処理後6週間でコロニーにはわずか1~2個の生存細胞しか存在しなかった。18週目には、ビーズの約10が1つ又は2つの大きな細胞コロニーを発生した。これにより、希少なドセタキセル耐性RENCA細胞がビーズ内に新しいコロニーを形成できることが示された。最近の証拠では、胚幹細胞のマーカーであるOCT4オクタマー結合転写因子4を他の転写因子とともに使用することにより、成熟細胞を多能性幹細胞様に誘導できることが示唆されている。例えば、ParketalNature451141146を参照されたい。幹細胞のさらなるマーカー特性は、例えば、本明細書に参照により援用されるInternationalStemCellInitiativeetalNatBiotechnol2580316に記載されている。ドセタキセルで処理した細胞に残存した細胞が処理後6週間でこのマーカーを示すか否かを検証するために実験を行った。生存細胞を同定するため、DAPIで細胞を染色した。一方、標準的な免疫化学手順により、OCT4に対するウサギポリクローナル抗体、及びFluor488共役体で標識されたヤギ抗-Ig6抗体を用いて、OCT4に対して染色した。結果は、生存細胞がOCT4を発現したことを示した。ドセタキセル耐性であることにより得られた発現は、残存する細胞が癌幹細胞であることを示唆する。癌幹細胞の必要条件は、癌細胞のコロニーを形成する能力である。上述の癌幹細胞が癌細胞のコロニーを形成し得るか否かを決定するため、ビーズからコロニーを取り除き、除去から5~6週間後に生きている細胞を機械的破壊により採取し、RPMI1640と10新生子牛血清の中でピンセットを使ってコロニーを細分化した。次に、アガロース残骸を最小限に抑えるために懸濁液を40μm細胞ろ過器に通し、遠心分離によりペレット化した。細胞ペレットをナイーブ培地中で再懸濁し、invitro10新生子牛血清を補充したRPMI1640中200細胞/mlまたはinvivoのいずれかで培養した。同化させるため、レシピエントマウスからの一滴の血液を200個の細胞と混合して血餅を形成し、血液を採取したマウスの腎臓被膜下に移植した。その後、これらのマウスにおける腫瘍の成長を観察した。精製された幹細胞のinvivoでの移植後の腫瘍の発生は、当該技術分野において承認された、癌幹細胞を同定する判断基準と考えられる。invitroで成長したRENCA細胞は、単層で成長した通常のRENCA細胞よりかなり大きく、約16週間、細胞の成長が観察されなかった。培養後16~17週間で、細胞はプラークを形成し、1週間経過すると増殖を始め、培養物中で単層として成長した。しかし、単層成長開始後2週間で、これらの細胞の成長速度は通常のRENCA細胞と同等となり、大きさと形態も含めて、通常のRENCA単層細胞と同様に見えた。移植を受けた10匹のマウスのうち、1匹が被膜下に腫瘍を発生し、誘導後98日で死亡した。また、このマウスは肺転移も発生した。上記の結果は、これらの細胞が癌幹細胞と考えられることを示す。前述の実施例は、ドセタキセルなどの化学療法剤に耐性があり且つOCT4発現などの幹細胞の1つ以上の特性を有する癌細胞を単離する方法を含む、本発明の様々な態様を説明している。幹細胞のその他の特性は当該分野で周知であり、ここでは繰り返さない。上記方法は、癌細胞のサンプルをアガロース含有ビーズ内にカプセル化してからアガロースでコーティングすること、得られたビーズを培養してビーズ内に含有された癌細胞を培養すること、このビーズを化学療法剤と接触させること、及び生存している細胞をそのままで或いはビーズから除去し、OCT4を発現している生存細胞を決定することを含む。上述のように、本明細書中に記載された種類の細胞は被験者における癌の再発の原因であるため、本方法を、例えば、癌を発症した対象の予後を示すために使用することができる。基本的に、前記細胞の割合が高い場合、その患者の予後は、カプセル化されたサンプル内にこのような細胞を僅かしか又は全く示さない患者の場合に比べて不良であることを示す。本発明の方法において、任意の化学療法剤、及び任意の種類の癌を使用してもよい。当業者であれば、癌治療のための多くのその他の周知の治療薬を認識するであろう。同様に、例えば上述の参照文献から、本明細書に記載されたものに加え、様々な癌及びアガロースを使用し得ることが理解されよう。また、本発明のビーズは、コラーゲンなどの材料、またはアガロースと相溶性があるその他の材料を含んでもよい。癌細胞は、好ましくは哺乳類細胞であり、最も好ましくはヒト細胞である。しかし、単離された細胞は本明細書で報告された周知の化学療法剤に耐性であるという事実は、化学療法自体に耐性であることを意味するものではない。本明細書で試験した薬剤は、示されているように、一般的に、急速に増殖する細胞の破壊に有用な薬物である。アガロースでコーティングされたアガロースビーズ内に残存する細胞によって示される種類の細胞に適用されるその他の治療法が存在し、その治療法は当業者に周知であろう。本明細書で報告されていないが、このような薬物を上記の幹細胞様の化学療法耐性OCT4発現細胞に対して試験してもよく、また、例えば、対象は治療の第一過程で標準的な抗癌剤を受け、続いて本明細書に記載された、単離された細胞の種類に沿った薬剤を受けるといった治療計画を作成してもよい。このような細胞は、ドセタキセルのような化学療法剤に耐性があり、OCT4を発現する、単離された癌細胞である。本発明の本態様において、対象の物質を、第1の薬剤との接触後に残存する幹細胞様癌細胞に対して試験してもよく、或いは幹細胞様癌細胞の別のサンプルをカプセル化して同様に進めてもよい。当業者であれば、本発明は、対象の化合物が抗腫瘍剤として有効であるか否かを同定するための方法に関することにも注目するであろう。理解されるように、本方法は、癌細胞のサンプルを含有する、アガロースでコーティングされたアガロースビーズに、選択された期間、選択された濃度で、対象の化合物を接触させること、及びこの化合物が対照よりも高い割合の細胞を破壊するか否かを決定することを含む。このような場合、この化合物は、混合された細胞集団内で癌細胞を破壊する場合や、細胞混合物から非幹細胞の癌細胞を排除する場合などの用途のような非治療関係に加えて、治療的にも有用であると考えられる。また、組み合わせ療法が適切であるか否かを明らかにするために、2つ以上の潜在的に有用な治療薬のカクテルや、周知の治療薬と試験化合物の組み合わせも考えられる。本発明の他の特徴は当業者に明らかであり、ここで繰り返す必要はないであろう。適用されてきた用語及び表現は、記載の用語として使用され、制限の用語として使用されない。このような用語及び表現の使用において、示された又は記載された特徴の均等物及びその部分を排除することは意図されておらず、本発明の範囲内で様々な変更が可能であることが理解される。