"VKORC1遺伝子の1639番目の塩基の多型を検出するためのプローブであって、配列番号1または2に示す塩基配列において塩基番号80~89を含む10~50塩基長の塩基配列であり、配列番号1または2における80番目の塩基に対応する塩基がシトシンである以外は配列番号1または2に相同性を有し、塩基番号80に対応する塩基が蛍光色素で標識されているオリゴヌクレオチドからなることを特徴とする多型検出用プローブ。前記オリゴヌクレオチドは、蛍光色素で標識された塩基番号80に対応する塩基を5’末端から数えて1~3番目の位置に有する、請求項1に記載の多型検出用プローブ。前記オリゴヌクレオチドは、蛍光色素で標識された塩基番号80に対応する塩基を5’末端に有する、請求項1に記載の多型検出用プローブ。前記オリゴヌクレオチドは、標的配列にハイブリダイズしないときに蛍光を発し、且つ標的配列にハイブリダイズしたときに蛍光強度が減少するかまたは増加する、請求項1~3のいずれか1項に記載の多型検出用プローブ。前記オリゴヌクレオチドが、標的配列にハイブリダイズしないときに蛍光を発し、標的配列にハイブリダイズしたときに蛍光強度が減少する、請求項4に記載の多型検出用プローブ。前記オリゴヌクレオチドの塩基長が10~40である、請求項1~5のいずれか1項に記載の多型検出用プローブ。前記オリゴヌクレオチドの塩基長が15~30である、請求項1~6のいずれか1項に記載の多型検出用プローブ。前記オリゴヌクレオチドの塩基長が15~25である、請求項1~7のいずれか1項に記載の多型検出用プローブ。前記プローブが、融解曲線分析用のプローブである、請求項1~8のいずれか1項に記載の多型検出用プローブ。前記オリゴヌクレオチドが配列番号6で示される、請求項1~9のいずれか1項に記載の多型検出プローブ。請求項1~10のいずれか1項に記載の多型検出用プローブを用いるVKORC1遺伝子近傍領域の多型検出方法。I請求項1~10のいずれか1項に記載の多型検出用プローブおよび試料中の一本鎖核酸を接触させて、前記蛍光標識オリゴヌクレオチドおよび前記一本鎖核酸をハイブリダイズさせてハイブリッド形成体を得ること、II前記ハイブリッド形成体を含む試料の温度を変化させることで、前記ハイブリッド形成体を解離させ、前記ハイブリッド形成体の解離に基づく蛍光シグナルの変動を測定すること、III前記シグナルの変動に基づいてハイブリッド形成体の解離温度であるTm値を決定すること、並びにIV前記Tm値に基づいて、VKORC1遺伝子における多型の存在または多型を有する核酸の存在比を決定すること、を含む、請求項11に記載の多型検出方法。さらに、前記工程Iの前または工程Iと同時に核酸を増幅することを含む、請求項12に記載の多型検出方法。ワーファリンの適量を判断する方法であって、請求項11~13のいずれか1項に記載の多型検出方法により、VKORC1遺伝子近傍領域における多型を検出すること、および、検出された多型の有無に基づいて、ワーファリンの適量を判断することを含む、方法。請求項1~10のいずれか1項に記載の多型検出用プローブを含む、多型検出用キット。配列番号1に示す塩基配列において、前記オリゴヌクレオチドがハイブリダイズする配列を含む領域を鋳型として増幅可能なプライマーをさらに含む、請求項15に記載の多型検出用キット。前記プライマーが配列番号3と4に記載のプライマーである、請求項16に記載の多型検出キット。さらに、配列番号89に記載のプライマーおよび配列番号10に記載のプローブを含む、請求項16または17に記載の多型検出用キット。本発明は、VKORC1遺伝子の1639番目の塩基の多型を検出するのに有効な消光プローブを特定し、VKORC1遺伝子の1639番目の塩基の多型を検出する方法、およびそのためのキットを提供することを課題とする。本発明者は、VKORC1遺伝子の1639番目の塩基の多型を含む特定の領域に基づいて消光プローブを設計し、該消光プローブを用いる融解曲線分析を行うことにより当該変異を検出できることを見出し、本発明を完成させるに至った。すなわち、本発明は以下の通りである。1VKORC1遺伝子の1639番目の塩基の多型を検出するためのプローブであって、配列番号1または2に示す塩基配列において塩基番号80~89を含む10~50塩基長の塩基配列であり、配列番号1または2における80番目の塩基に対応する塩基がシトシンである以外は配列番号1または2に相同性を有し、塩基番号80に対応する塩基が蛍光色素で標識されているオリゴヌクレオチドからなることを特徴とする多型検出用プローブ。2前記オリゴヌクレオチドは、蛍光色素で標識された塩基番号80に対応する塩基を5’末端から数えて1~3番目の位置に有する、1に記載の多型検出用プローブ。3前記オリゴヌクレオチドは、蛍光色素で標識された塩基番号80に対応する塩基を5’末端に有する、1に記載の多型検出用プローブ。4前記オリゴヌクレオチドは、標的配列にハイブリダイズしないときに蛍光を発し、且つ標的配列にハイブリダイズしたときに蛍光強度が減少するかまたは増加する、1~3のいずれか1項に記載の多型検出用プローブ。5前記オリゴヌクレオチドが、標的配列にハイブリダイズしないときに蛍光を発し、標的配列にハイブリダイズしたときに蛍光強度が減少する、4に記載の多型検出用プローブ。6前記オリゴヌクレオチドの塩基長が10~40である、1~5のいずれか1項に記載の多型検出用プローブ。7前記オリゴヌクレオチドの塩基長が15~30である、1~6のいずれか1項に記載の多型検出用プローブ。8前記オリゴヌクレオチドの塩基長が15~25である、1~7のいずれか1項に記載の多型検出用プローブ。9前記プローブが、融解曲線分析用のプローブである、1~8のいずれか1項に記載の多型検出用プローブ。10前記オリゴヌクレオチドが配列番号6で示される、1~9のいずれか1項に記載の多型検出プローブ。111~10のいずれか1項に記載の多型検出用プローブを用いるVKORC1遺伝子近傍領域の多型検出方法。12I1~10のいずれか1項に記載の多型検出用プローブおよび試料中の一本鎖核酸を接触させて、前記蛍光標識オリゴヌクレオチドおよび前記一本鎖核酸をハイブリダイズさせてハイブリッド形成体を得ること、II前記ハイブリッド形成体を含む試料の温度を変化させることで、前記ハイブリッド形成体を解離させ、前記ハイブリッド形成体の解離に基づく蛍光シグナルの変動を測定すること、III前記シグナルの変動に基づいてハイブリッド形成体の解離温度であるTm値を決定すること、並びにIV前記Tm値に基づいて、VKORC1遺伝子における多型の存在または多型を有する核酸の存在比を決定すること、を含む、11に記載の多型検出方法。13さらに、前記工程Iの前または工程Iと同時に核酸を増幅することを含む、12に記載の多型検出方法。14ワーファリンの適量を判断する方法であって、11~13のいずれか1項に記載の多型検出方法により、VKORC1遺伝子近傍領域における多型を検出すること、および、検出された多型の有無に基づいて、ワーファリンの適量を判断することを含む、方法。151~10のいずれか1項に記載の多型検出用プローブを含む、多型検出用キット。16配列番号1に示す塩基配列において、前記オリゴヌクレオチドがハイブリダイズする配列を含む領域を鋳型として増幅可能なプライマーをさらに含む、15に記載の多型検出用キット。17前記プライマーが配列番号3と4に記載のプライマーである、16に記載の多型検出キット。18さらに、配列番号89に記載のプライマーおよび配列番号10に記載のプローブを含む、16または17に記載の多型検出用キット。なお、上記においてVKORC1遺伝子の多型とは同遺伝子の近傍領域の多型をも含む。本発明のプローブを遺伝子増幅系中に添加しておくことで、PCR反応終了後、融解曲線分析Tm解析を行うだけで、複数の遺伝子変異型のタイピングが可能となる。さらに、全血や口腔粘膜懸濁液を直接検査することが可能であるため、手間やコストを低減することができる。本発明のプローブは、特異性が高く、検出感度が高い。本発明の方法を用いることにより、PCRを行う場合であっても、増幅産物を取り出す必要がないため、コンタミネーションの危険性がほぼ無い。また、本発明の方法は、機構が簡単なので自動化が容易である。本発明の方法により、VKORC1遺伝子の1639番目の塩基の多型とCYP2C93変異部位の多型とを同時に検出することもできる。<1>本発明プローブおよび本発明検出方法本発明のプローブは、VKORC1遺伝子の1639番目の塩基の多型を検出するためのプローブであって、配列番号1または2に示す塩基配列において塩基番号80~89を含む10~50塩基長の塩基配列であり、配列番号1または2における80番目の塩基に対応する塩基がシトシンである以外は配列番号1または2に相同性を有し、塩基番号80に対応する塩基が蛍光色素で標識されているオリゴヌクレオチドからなることを特徴とする。ここで、VKORC1遺伝子の1639番目の塩基は、配列番号1,2の88番目の塩基である。本発明プローブは、配列番号1に示す塩基配列VKORC1遺伝子の1639番目の塩基における野生型の塩基を有する配列または配列番号2に示す塩基配列VKORC1遺伝子の1639番目の塩基における変異型多型の塩基を有する配列において上記特定された配列を有する他は、特許文献1,2に記載された消光プローブと同様にして作製できる。なお、本発明の配列番号1に示す配列は、GeneBankのアクセッションナンバーNG011564の3501番目から3680番目である。本発明のプローブの長さとしては、10~50塩基長、好ましくは10~40塩基長、より好ましくは15~30、最も好ましくは15~25である。本発明に使用されるプローブの塩基配列の例としては、5cattggccrggtgcggt3配列番号5が挙げられる。配列中、rはaまたはgを表す。より好ましくは、5cattggccaggtgcggt3配列番号6である。蛍光色素としては、特許文献1,2に記載されたものが使用できるが、具体例としては、PacificBlue、FAM、TAMRA、BODIPYFL等が挙げられる。蛍光色素のオリゴヌクレオチドへの結合方法は、通常の方法、例えば特許文献1,2に記載の方法に従って行うことができる。本願における相同性とは、特定の塩基配列において、塩基配列に80以上、より好ましくは90以上、最も好ましくは95以上の相同性を有する配列を有している塩基配列をさす。すなわち、本発明のプローブは、配列番号1または2に示す塩基配列において塩基番号80から89を含む10~50塩基長の塩基配列に相同的な配列であるが、完全に同一ではなく、5塩基、4塩基、3塩基、2塩基、または1塩基のみ異なっていてもよい。本発明プローブは、標的配列にハイブリダイゼーションしたときに、蛍光色素の蛍光が減少または増加することが好ましい。本発明プローブは、好ましくは、ハイブリダイゼーションしたときに、蛍光色素の蛍光が消光する、消光プローブである。また、本発明プローブは、5’または3’が蛍光色素により標識化されていることが好ましい。なお、本明細書において、5’末端から数えて1~3番目という場合は、5’末端を1番目として数え、3’末端から数えて1~3番目という場合は、3’末端を1番目として数える。本実施例の表2に示されるように、配列番号6のオリゴヌクレオチドを用いることにより、VKORC1遺伝子の1639番目の塩基の多型を検出することができる。本発明検出方法は、VKORC1遺伝子の1639番目の塩基の多型の部位を有する核酸について、蛍光色素で標識された核酸プローブを用いて、蛍光色素の蛍光を測定することにより融解曲線分析を行い、融解曲線分析の結果に基づいて多型を検出する方法であって、核酸プローブは本発明プローブであることを特徴とする。本発明検出方法は、VKORC1遺伝子の1639番目の塩基の多型の部位を含む領域を増幅すること、および、本発明プローブを用いることの他は、通常の核酸増幅および融解曲線分析Tm分析の方法に従って行うことができる。本発明の検出方法は、好ましくは、本発明のプローブを使用し、以下の工程を含むことを特徴とする。IDNAを含有する試料に、本発明のプローブを添加して前記DNAに前記プローブをハイブリダイズさせる工程、II温度を変化させて前記DNAと前記プローブとのハイブリッド形成体を解離させ、ハイブリッド形成体の解離に基づくシグナルの変動を測定する工程、III前記シグナルの変動を解析してTm値を決定する工程、およびIV前記Tm値から目的の多型の有無または多型を有する塩基配列の存在比を決定する工程。本発明検出方法は、本発明プローブを用いることの他は、通常の核酸増幅および融解曲線分析Tm分析の方法に従って行うことができる。また、本発明の検出方法は、前記工程Iの前または工程Iと同時に核酸を増幅することを含んでいてもよい。核酸増幅の方法としては、ポリメラーゼを用いる方法が好ましく、その例としては、PCR、ICAN、LAMP等が挙げられる。ポリメラーゼを用いる方法により増幅する場合は、本発明プローブの存在下で増幅を行うことが好ましい。用いるプローブに応じて、増幅の反応条件等を調整することは当業者であれば容易である。これにより、核酸の増幅後にプローブのTm値を解析するだけなので、反応終了後増幅産物を取り扱う必要がない。よって、増幅産物による汚染の心配がない。また、増幅に必要な機器と同じ機器で検出することが可能なので、容器を移動する必要すらない。よって、自動化も容易である。本発明において、試料中のDNAは、一本鎖DNAでもよいし二本鎖DNAであってもよい。前記DNAが二本鎖DNAの場合は、例えば、前記ハイブリダイズ工程に先立って、加熱により前記試料中の二本鎖DNAを解離させる工程を含むことが好ましい。二本鎖DNAを一本鎖DNAに解離することによって、次のハイブリダイズ工程において、検出用プローブとのハイブリダイズが可能となる。本発明において、前記試料中のDNAに対する、本発明のプローブの添加割合モル比は、制限されないが、検出シグナルを十分に確保できることから、試料中のDNAに対して1倍以下が好ましく、0.3倍以下がより好ましい。この際、試料中のDNAとは、例えば、検出目的の多型が発生している検出対象DNAと前記多型が発生していない非検出対象DNAとの合計でもよいし、検出目的の多型が発生している検出対象配列を含む増幅産物と前記多型が発生していない非検出対象配列を含む増幅産物との合計でもよい。なお、試料中のDNAにおける前記検出対象DNAの割合は、通常、不明であるが、結果的に、前記プローブの添加割合モル比は、検出対象DNA検出対象配列を含む増幅産物に対して100倍以下となることが好ましく、より好ましくは50倍以下、さらに、好ましくは30倍以下である。また、その下限は特に制限されないが、例えば、0.001倍以上であり、好ましくは0.01倍以上であり、より好ましくは0.2倍以上である。前記DNAに対する本発明のプローブの添加割合は、例えば、二本鎖DNAに対するモル比でもよいし、一本鎖DNAに対するモル比でもよい。Tm値について説明する。二本鎖DNAを含む溶液を加熱していくと、260nmにおける吸光度が上昇する。これは、二本鎖DNAにおける両鎖間の水素結合が加熱によってほどけ、一本鎖DNAに解離DNAの融解することが原因である。そして、全ての二本鎖DNAが解離して一本鎖DNAになると、その吸光度は加熱開始時の吸光度二本鎖DNAのみの吸光度の約1.5倍程度を示し、これによって融解が完了したと判断できる。この現象に基づき、融解温度Tmとは、一般に、吸光度が、吸光度全上昇分の50に達した時の温度と定義される。本発明において、Tm値を決定するための温度変化に伴うシグナル変動の測定は、前述のような原理から260nmの吸光度測定により行うこともできるが、本発明のプローブに付加した標識のシグナルに基づくシグナルであってDNAとプローブとのハイブリッド形成の状態に応じて変動するシグナルを測定することが好ましい。このため、本発明のプローブとして、前述の標識化プローブを使用することが好ましい。前記標識化プローブとしては、例えば、標的配列にハイブリダイズしないときに蛍光を発し、且つ標的配列にハイブリダイズしたときに蛍光強度が減少消光する蛍光標識オリゴヌクレオチドプローブ、または標的配列にハイブリダイズしないときに蛍光を発し、且つ標的配列にハイブリダイズしたときに蛍光強度が増加する蛍光標識オリゴヌクレオチドプローブが挙げられる。前者のようなプローブであれば、検出対象配列とハイブリッド二本鎖DNAを形成している際にはシグナルを示さないか、シグナルが弱いが、加熱によりプローブが遊離するとシグナルを示すようになるか、シグナルが増加する。また、後者のプローブであれば、検出対象配列とハイブリッド二本鎖DNAを形成することによってシグナルを示し、加熱によりプローブが遊離するとシグナルが減少消失する。したがって、この標識に基づくシグナルの変化をシグナル特有の条件吸光度等で検出することによって、前記260nmの吸光度測定と同様に、融解の進行ならびにTm値の決定を行うことができる。標識化プローブにおける標識化物質は、例えば、前述のとおりであるが蛍光色素標識化プローブが好ましい。核酸増幅を行う際の鋳型となる核酸としては、核酸を含んでいればよく、特に制限されないが、例えば、血液、口腔粘膜懸濁液、爪や毛髪等の体細胞、生殖細胞、乳、腹水液、パラフィン包埋組織、胃液、胃洗浄液、腹膜液、羊水、細胞培養などの任意の生物学的起源に由来する又は由来しうるものである。鋳型となる核酸は、該起源から得られたままで直接的に、あるいは該サンプルの特性を改変するために前処理した後で使用することができる。以下、PCRを用いる場合を例として、さらに説明する。PCRに用いるプライマー対は、本発明プローブがハイブリダイゼーションできる領域が増幅されるようにする他は、通常のPCRにおけるプライマー対の設定方法と同様にして設定することができる。プライマーの長さおよびTm値は、通常には、12mer~40merで40~70°C、好ましくは16mer~30merで55~60°Cである。プライマー対の各プライマーの長さは同一でなくてもよいが、両プライマーのTmはほぼ同一通常には、相違が2°C以内であることが好ましい。なお、Tm値は最近接塩基対法により算出した値である。プライマー対の例としては、配列番号3,4に示す塩基配列を有するプライマーからなるものが挙げられる。PCRは、本発明で使用される本発明プローブの存在下で行うことが好ましい。これにより、増幅反応終了後に増幅産物を取り扱う操作を行うことなくTm分析を行うことができる。用いるプローブに応じて、プライマーのTm値やPCRの反応条件を調整することは当業者であれば容易である。代表的なPCR反応液の組成を挙げれば、以下の通りである。また、代表的な温度サイクルを挙げれば、以下の通りであり、この温度サイクルを通常25~50回繰り返す。変性、90~98°C、1~60秒アニーリング、50~70°C、10~60秒伸長、60~75°C、10~180秒アニーリングおよび伸長を一ステップで行う場合には、55~70°C、10~180秒の条件が挙げられる。Tm分析は、本発明プローブの蛍光色素の蛍光を測定する他は通常の方法に従って行うことができる。蛍光の測定は、蛍光色素に応じた波長の励起光を用い発光波長の光を測定することに行うことができる。Tm分析における昇温速度は、通常には、01~1°C/秒である。Tm分析を行うときの反応液の組成は、プローブとその塩基配列に相補的な配列を有する核酸とのハイブリダイゼーションが可能であれば特に制限されないが、通常には、一価の陽イオン濃度が15~5mM、pHが7~9である。PCR等のDNAポリメラーゼを用いる増幅方法の反応液は、通常、この条件を満たすので、増幅後の反応液をそのままTm分析に用いることができる。Tm分析の結果に基づくVKORC1遺伝子の1639番目の塩基の多型の検出は通常の方法に従って行うことができる。本発明における検出とは、変異の有無の検出を包含する。なお、本発明のプローブおよび方法により、変異の有無の検出が可能であるため、変異の有無に基づいて、ワーファリンの適量を判断することも本発明に含まれる。具体的には、VKORC1遺伝子の1639番目の塩基がAとなっている場合には、ワーファリンに対する感受性が高く、必要投与量が減少することが示唆される。また、本発明の方法により、VKORC1遺伝子の1639番目の塩基の多型とCYP2C93変異部位の多型とを同時に検出することも可能であり、CYP2C93の変異がある場合も同様に、ワーファリンに対する感受性が高く、必要投与量が減少することが示唆される。なお、CYP2C9の多型であるCYP2C93の遺伝子配列及びその変異部位の多型を検出することが可能なプローブの塩基配列は、例えば、WO2008/066163、WO2008/117782などに記載されている。具体的には、3’末端が蛍光色素で標識され、ハイブリダイゼーションしたときに蛍光色素の蛍光が減少する核酸プローブであって、WO2008/066163の配列番号28又は29WO2008/117782の配列番号44又は45の塩基配列からなる核酸プローブである。本発明のVKORC1遺伝子の多型と同時にCYP2C93変異部位の多型とを同時に検出すなわち、同一の系で検出を行なうことができるプローブとしては、上記WO2008/066163及びWO2008/117782に記載の核酸プローブが挙げられる。<2>本発明キット本発明キットは、本発明の検出方法に用いるためのキットである。このキットは、蛍光色素で標識され、ハイブリダイゼーションしたときに蛍光色素の蛍光が変化する核酸プローブ好ましくは、消光プローブであって、上記オリゴヌクレオチドからなる核酸プローブを含むことを特徴とする。なお、本発明のキットは、ワーファリンの適量を判断するのにも使用できる。プローブについては、本発明プローブに関し、上記に説明した通りである。本発明検出キットは、プローブの他に、本発明の検出方法における核酸増幅を行うのに必要とされる試薬類、特にDNAポリメラーゼを用いる増幅のためのプライマーをさらに含んでいてもよい。本発明検出キットにおいてプローブ、プライマーおよびその他の試薬類は、別個に収容されていてもよいし、それらの一部が混合物とされていてもよい。以下に、本発明を実施例により具体的に説明する。実施例1シングル、精製ゲノムVKORC1遺伝子の1639番目の塩基の多型の部位を含む塩基配列配列番号1野生型に基づき、多型の部位を増幅できるように表2に示すプライマーを設計した。表2中、FプライマーおよびRプライマーの位置は、配列番号1に示す塩基配列における塩基番号を示す。プローブ1の位置は、配列番号2に示す塩基配列における塩基番号を示す。次に、表2に示す、末端部にCを有するプローブを設計した。表2中、プローブ1の位置は、配列番号2に示す塩基配列における塩基番号を示す。3’末端のPは、リン酸化されていることを示す。TAMRAによる標識は、常法に従って行った。融解温度Tmは、httpwwwmnekonettmcalcのNearestNeighbormethod、primerconc250nM、Naconc50mMで計算した。サンプルとして全血から精製したヒトゲノム100コピー反応液表4のヒトゲノム1および2を用い、全自動SNPs検査装置商品名idensy商標、アークレイ社製を用いてPCRおよびTm分析を行った。PCRおよびTm分析の条件は表5の通り、PCR反応液組成は表3の通りである。Tm分析における励起波長および検出波長は、それぞれ520~555nmおよび585~700nmTAMRAであった。表2のプローブを用いてPCRおよびTm分析を行った結果、ヒトゲノム1については、TAMRAのピークが56°Cおよび64°C付近に見られ、ヒトゲノム2については、TAMRAのピークが64°C付近に見られた図1。実施例2シングル、全血サンプルとして全血を用い、その他は実施例1と同様に反応させた。表2のプローブを用いてPCRおよびTm分析を行った結果、実施例1と同様に、ヒトゲノム1については、TAMRAのピークが56°Cおよび64°C付近に見られ、ヒトゲノム2については、TAMRAのピークが64°C付近に見られた図2。比較例表6のPCR反応液組成を用い、その他は実施例1と同様に反応させた。表7のプローブを用いてPCRおよびTm分析を行った結果、ヒトゲノム1および2について、TAMRAのピークがともに59°C付近に見られるのみであり、ヘテロとホモを見分けることはできなかった図3。従って、プローブの5’または3’末端のCが蛍光標識されていればどんなプローブ配列でもよいというわけではなく、配列番号6のプローブのように、80番目のCが蛍光標識されていることが重要であることが理解される。実施例1,2および比較例の結果より、配列番号6のプローブを用いたとき、VKORC1遺伝子の1639番目の塩基の多型について、Tm分析で解析の可能な蛍光強度の変化が認められた。すなわち、この変異についてヘテロ接合体であるヒトゲノム1は56°Cおよび64°C付近に2つのピークを有し、変異型であるヒトゲノム2は64°C付近に1つのみピークを有するものであり、固有の蛍光強度の変化量のパターンの変化が存在する。また、これらの結果から、この変異について野生型であるヒトゲノムで反応させた場合は、56°C付近に1つのみピークを有することが分かる。従って、配列番号6のプローブを用いることにより、VKORC1遺伝子の1639番目の塩基の多型を検出することができる。実施例3マルチ、精製ゲノム表8のPCR反応液組成を用い、その他は実施例1と同様に反応させた。Tm分析における励起波長および検出波長は、それぞれ420~485nmおよび520~555nmBODIPYFL、または、それぞれ520~555nmおよび585~700nmTAMRAであった。なお、上記CYP2C93プローブ1は、WO2008/066163の配列番号29、WO2008/117782の配列番号45に記載された塩基配列からなる。TAMRAの蛍光により評価を行った結果、ヒトゲノム1については、TAMRAのピークが52°Cおよび60°C付近に見られ、ヒトゲノム2については、TAMRAのピークが60°C付近に見られた図4。また、BODIPYFLの蛍光により評価を行った結果、ヒトゲノム1については、BODIPYFLのピークが49°C付近に見られ、ヒトゲノム2については、BODIPYFLのピークが49°Cおよび56°C付近に見られた図5。実施例4マルチ、全血サンプルとして全血を用い、その他は実施例3と同様に反応させた。なお、全血は下記の前処理を行ったものを用いた。全血10μlを下記希釈液70μlに加え、よく混合した後、この混合液10μlを下記希釈液70μlに加えた。この混合液17μlを95°C10分で加熱して4μlの前処理済全血を得、これをサンプルとして用いた。希釈液10mMTrisHCl01mMEDTA03SDS希釈液10mMTrisHCl01mMEDTATAMRAの蛍光により評価を行った結果、実施例3と同様に、ヒトゲノム1については、TAMRAのピークが51°Cおよび60°C付近に見られ、ヒトゲノム2については、TAMRAのピークが60°C付近に見られた図6。また、BODIPYFLの蛍光により評価を行った結果、ヒトゲノム1については、BODIPYFLのピークが49°C付近に見られ、ヒトゲノム2については、BODIPYFLのピークが49°Cおよび56°C付近に見られた図7。実施例3,4の結果より、配列番号6のプローブを用いたとき、VKORC1遺伝子の1639番目の塩基の多型について、Tm分析で解析の可能な蛍光強度の変化が認められた。すなわち、この変異についてヘテロ接合体であるヒトゲノム1は52°Cおよび60°C付近に2つのピークを有し、変異型であるヒトゲノム2は60°C付近に1つのみピークを有するものであり、固有の蛍光強度の変化量のパターンの変化が存在する。また、これらの結果から、この変異について野生型であるヒトゲノムで反応させた場合は、52°C付近に1つのみピークを有することが分かる。さらに、CYP2C93変異部位の多型についても、Tm分析で解析の可能な蛍光強度の変化が認められた。すなわち、この変異について野生型であるヒトゲノム1は49°C付近に1つのみピークを有し、ヘテロ接合型であるヒトゲノム2は49°Cおよび56°C付近に2つのピークを有するものであり、固有の蛍光強度の変化量のパターンの変化が存在する。また、これらの結果から、この変異について変異型であるヒトゲノムで反応させた場合は、56°C付近に1つのみピークを有することが分かる。従って、配列番号6,10のプローブを同時に用いることにより、VKORC1遺伝子の1639番目の塩基の多型およびCYP2C93変異部位の多型を同時に検出することができる。"