"抗ハプテンモノクローナル抗体とα型抗イディオタイプ抗体とβ型抗イディオタイプ抗体とを含む、ハプテン測定試薬であって、抗ハプテンモノクローナル抗体を取得するのに用いる動物種と、α型抗イディオタイプ抗体およびβ型抗イディオタイプ抗体を取得するのに用いる動物種とが異なる、前記測定試薬。α型抗イディオタイプ抗体およびβ型抗イディオタイプ抗体が、α型抗イディオタイプ抗体およびβ型抗イディオタイプ抗体を取得するのに用いる動物種に対して抗ハプテンモノクローナル抗体を免疫して得られる抗血清と、抗ハプテンモノクローナル抗体を取得するのに用いた動物種由来の抗体または血清と、を共存させた状態でスクリーニングして得られた抗体である、請求項1に記載の測定試薬。抗ハプテンモノクローナル抗体を取得するのに用いる動物種がウサギであり、α型抗イディオタイプ抗体およびβ型抗イディオタイプ抗体を取得するのに用いる動物種がマウスである、請求項1または2に記載の抗体。ハプテンがステロイドホルモンである、請求項1から3のいずれかに記載の測定試薬。非特許文献2および3で開示の抗イディオタイプ抗体を用いた非競合型の免疫測定法では、3種類の抗体抗ハプテンモノクローナル抗体、α-Id、β-Idいずれもマウス由来の抗体を使用している。マウス由来のα-Idおよびβ-Idを取得する際、マウスに対してマウス由来の抗ハプテンモノクローナル抗体を免疫する必要がある。しかしながら、同一動物種由来のタンパク質を免疫することになるため異物として認識されず、抗体価が上昇しづらい問題があった。そのため、前記抗ハプテンモノクローナル抗体をキャリアタンパク質と結合させることで抗原性を与えた上でマウスに対し免疫する必要があった。本発明の目的は、抗ハプテンモノクローナル抗体、α-Idおよびβ-Idを含む、ハプテン測定試薬において、従来とは異なる系を提供することにある。前記課題を鑑みてなされた本発明の第一の態様は、抗ハプテンモノクローナル抗体とα型抗イディオタイプ抗体とβ型抗イディオタイプ抗体とを含む、ハプテン測定試薬であって、抗ハプテンモノクローナル抗体を取得するのに用いる動物種と、α型抗イディオタイプ抗体およびβ型抗イディオタイプ抗体を取得するのに用いる動物種とが異なる、前記測定試薬である。また本発明の第二の態様は、α型抗イディオタイプ抗体およびβ型抗イディオタイプ抗体が、α型抗イディオタイプ抗体およびβ型抗イディオタイプ抗体を取得するのに用いる動物種に対して抗ハプテンモノクローナル抗体を免疫して得られる抗血清と、抗ハプテンモノクローナル抗体を取得するのに用いた動物種由来の抗体または血清と、を共存させた状態でスクリーニングして得られた抗体である、前記第一の態様に記載の測定試薬である。また本発明の第三の態様は、抗ハプテンモノクローナル抗体を取得するのに用いる動物種がウサギであり、α型抗イディオタイプ抗体およびβ型抗イディオタイプ抗体を取得するのに用いる動物種がマウスである、前記第一または第二の態様に記載の抗体である。また本発明の第四の態様は、ハプテンがステロイドホルモンである、前記第一から第三のいずれかに記載の測定試薬である。以下、本発明を詳細に説明する。1測定対象ハプテン本発明の試薬で測定可能なハプテンは、通常競合法により測定する、分子量の低い物質であれば特に限定はなく、一例として、トリヨードサイロニンT3、チロキシンT4、3,5-ジヨード-L-チロニンT2等の甲状腺ホルモンや、エストロンE1、エストラジオールE2、エストリオールE3、プロゲステロンprogesterone、コルチゾールcortisol等のステロイドホルモンがあげられる。特にエストラジオールE2に代表されるステロイドホルモンが、本発明の試薬で測定するハプテンとして好ましい。2抗イディオタイプ抗体本発明の試薬で使用する抗イディオタイプ抗体は、特定抗体の可変領域と結合する特殊な抗体のことをいい、α型とβ型の二種に分類される。α型抗イディオタイプ抗体α-Idは、前記特定抗体が認識する抗原と同時に結合可能な抗体である。一方β型抗イディオタイプ抗体β-Idは、前記特定抗体のパラトープに結合する抗体であり、前記特定抗体が認識する抗原と競合する抗体である。3動物種本発明の試薬で使用する抗イディオタイプ抗体α-Idおよびβ-Idを取得するのに用いる動物種は、本発明の試薬で使用する抗ハプテンモノクローナル抗体を取得するのに用いる動物種と異なる動物種であればよい。抗ハプテンモノクローナル抗体または抗イディオタイプ抗体を取得するのに用いる動物種としては、当業者が通常用いる、マウス、ラット、ウサギ、ニワトリ、ヤギなどが例示でき、ハプテン測定試薬として要求する感度や特異性、抗体の取得容易性などを考慮し、適宜選択すればよい。好ましい一例として、抗ハプテンモノクローナル抗体を取得するのに用いる動物種として、親和性の高い抗体の取得が可能なウサギを、抗イディオタイプ抗体を取得するのに用いる動物種として、抗体の取得が比較的容易なマウスを、それぞれ選択した系があげられる。4抗イディオタイプ抗体の取得方法本発明の試薬で使用する抗イディオタイプ抗体α-Idおよびβ-Idは、抗ハプテンモノクローナル抗体を、当該抗体を取得するのに用いた動物種とは異なる動物種に対して免疫することで取得することができる。抗ハプテンモノクローナル抗体を免疫する動物種は、当該抗体を取得するのに用いた動物種とは異なるため、当該抗体を異物として認識する。そのため当該抗体に対する抗体価は容易に上昇する。免疫する抗体の構造はパラトープを含む構造であれば特に限定はなく、Intact抗体を免疫してもよいし、Fab化した抗体、Fab’2化した抗体またはScFv化した抗体を免疫してもよい。なお抗体を免疫する際、フロイントアジュバンドなどのアジュバンドを併用してもよい。5抗イディオタイプ抗体産生ハイブリドーマの作製抗イディオタイプ抗体を産生するハイブリドーマは、前記4で免疫した動物種から脾臓細胞を採取し、それを骨髄腫細胞ミエローマ細胞と融合させることで得ることができる。細胞融合方法に特に限定はなく、通常一般的に行われている方法で融合すればよい。例えばポリエチレングリコールPEG法、電気融合法、センダイウイルスを用いる方法があげられる。6抗イディオタイプ抗体産生ハイブリドーマのスクリーニング前記5で得られたハイブリドーマには、目的とする抗イディオタイプ抗体α-Idまたはβ-Idを産生するハイブリドーマ以外に、抗ハプテンモノクローナル抗体のパラトープ近傍以外を認識する抗体目的外の抗体を産生するハイブリドーマも数多く存在する。当該目的外の抗体を発現するハイブリドーマは、スクリーニング時バッググラウンドを上昇させる要因となる。そこでスクリーニング時に、抗ハプテンモノクローナル抗体を取得するのに用いた動物種由来の抗体または血清を共存させると、当該バッググラウンドを低減させることができる。これにより、抗イディオタイプ抗体α-Idまたはβ-Idを産生するハイブリドーマのスクリーニングが容易に行なえるため、好ましい。抗ハプテンモノクローナル抗体を取得するのに用いた動物種由来の抗体または血清の共存量としては、抗体を用いる場合は5μg/mL以上が好ましく、血清を用いる場合は反応液量に対し5以上が好ましい。7抗体性能の評価得られた抗イディオタイプ抗体の評価には、当業者が通常用いる、ELISAEnzymeLinkedImmunosorbentAssay法やRIARadioimmunoassay法などで行なえばよい。本発明は、抗ハプテンモノクローナル抗体とα型抗イディオタイプ抗体α-Idとβ型抗イディオタイプ抗体β-Idとを含むハプテン測定試薬において、抗ハプテンモノクローナル抗体を取得するのに用いる動物種とα-Idおよびβ-Idを取得するのに用いる動物種とが異なることを特徴としている。従来の抗イディオタイプ抗体を用いた競合法によらないハプテン測定試薬は、前記3つの抗体を取得するのに用いる動物種が同一であったため、α-Idおよびβ-Idの取得が困難であったが、本発明の試薬は動物種が異なるため、α-Idおよびβ-Idの取得が容易である。そのため、競合法によらないハプテン測定試薬を従来より容易に製造することができる。以下、ハプテンとしてエストラジオールE2を用いたときの実施例により、本発明をさらに詳細に説明するが、本発明はこれらに限定されるものではない。実施例1動物への免疫免疫動物としては、マウスICRの5週齢メス5匹マウスNo.1からNo.5を使用した。抗原溶液とアジュバントとを等量混合したエマルジョンを作製し、それをマウスに対し1週間間隔で4回免疫した。なお抗原溶液は、1mg/mLの抗E2ウサギモノクローナル抗体と1mg/mLのE2を含むPBS溶液を用いた。またアジュバントは、初回の免疫ではフロイント完全アジュバントを、二回目以降の免疫ではフロイント不完全アジュバントを、それぞれ用いた。実施例2抗体価の確認以下に示すELISAEnzymeLinkedImmunosorbentAssayで抗体価の上昇を確認した。1αMouse-IgGFc1μg/mLMPBiomedicals社製をELISAプレートに固定化後、1スキムミルクでブロッキングした。2実施例1で免疫したマウスから採血した抗血清を、5のウサギ血清を含んだ0.1スキムミルク溶液で1000倍に希釈後、プレートに添加して、プレート上に固定した抗体と反応させた。3アルカリホスファターゼALPで標識した抗E2ウサギモノクローナル抗体と、E2希釈系列500ng/mLから2倍ずつ希釈とを、あらかじめ5のウサギ血清を含むPBS溶液中で混合後、プレートに添加して、プレート上に固定した抗体と反応させた。4未反応のALP標識抗E2抗体をB/FBound/Free分離後、ALPの基質である4-メチルウンベリフェルリン酸4-MUPをプレートに分注し、蛍光強度を測定することで検出した。結果を図1に示す。横軸にE2濃度、縦軸に蛍光強度Intensityをプロットし、抗血清の抗体価を比較した。マウスNo.2およびNo.5から得た抗血清において、E2濃度の上昇に伴い、蛍光強度が明らかに減少した。このことから、マウスNo.2およびNo.5の抗血清には、抗E2抗体のパラトープ付近を認識する抗体抗イディオタイプ抗体が含まれることが示唆された。実施例3抗体産生ハイブリドーマの作製実施例2で選択したマウスから、以下に示す方法で抗体産生細胞を作製した。1十分に抗体価の上昇したマウスNo.5の脾臓を摘出し、定法に従い脾臓細胞を調製した。調製した脾臓細胞を定法PEG法に従いマウスミエローマ細胞Sp2/0と融合させ、ハイブリドーマを作製した。2融合後のハイブリドーマ浮遊液を10FCSFetalcalfserumと1×HATを含むE-RDF培地極東製薬製に懸濁後、マイクロタイタープレートにまいて10日間培養し、培養上清を取得した。実施例4抗体産生ハイブリドーマのスクリーニング実施例3で得られた抗体産生ハイブリドーマを、以下に示す2つのELISAによりスクリーニングした。1抗E2モノクローナル抗体との反応性E2-1-1αMouse-IgGFc1μg/mLMPBiomedicals社製をELISAプレートに固定化後、1スキムミルクでブロッキングした。1-25のウサギ血清を含むPBS溶液中で実施例32の培養上清をプレート上で反応させた。1-3反応後、ALP標識抗E2ウサギモノクローナル抗体をプレート上で反応させ、B/F分離を行なった後、基質である4-MUPを分注し、蛍光強度を測定することで検出した。2抗E2モノクローナル抗体-E2複合体に対する反応性E22-1αMouse-IgGFc1μg/mLMPBiomedicals社製をELISAプレートに固定化後、1スキムミルクでブロッキングした。2-25のウサギ血清を含むPBS溶液中で実施例32の培養上清をプレート上で反応させた。2-3あらかじめE2500ng/mLと混合したALP標識抗E2ウサギモノクローナル抗体を反応させ、B/F分離を行なった後、基質である4-MUPを分注し、蛍光強度を測定することで検出した。1および2の測定データを並べてグラフにした図2。図2は評価を行なった培養上清中、E2-抗E2モノクローナル抗体に対する反応性に対するE2抗E2モノクローナル抗体-E2複合体に対する反応性が高かった8つNo.1からNo.8と、E2に対するE2-が高かった8つNo.9からNo.16の結果を示している。E2-に対するE2が高かった培養上清No.1からNo.8の中からNo.5を、E2に対するE2-が高かった培養上清No.9からNo.16の中からNo.14を、それぞれ選択し、それぞれを限界希釈により単クローン化することで、No.5由来のモノクローナル抗体Id-5と、No.14由来のモノクローナル抗体Id-14を単離した。実施例5モノクローナル抗体の評価実施例4で単離したモノクローナル抗体Id-5、Id-14の特性を以下の方法で評価した。1抗E2モノクローナル抗体-E2複合体との反応性実施例2に示したELISAと同様の反応系を用いて、単離したモノクローナル抗体の評価を行なった。なおE2希釈系列は250ng/mLから開始している。結果を図3に示す。横軸にはE2濃度を示し、縦軸には蛍光強度Intensityを示す。Id-5ではE2濃度の上昇に伴い蛍光強度が僅かに上昇した一方、Id-14ではE2濃度の上昇に伴い蛍光強度が大幅に減少した。この結果より、Id-14と抗E2ウサギモノクローナル抗体の反応は、E2により阻害されることがわかる。2ウサギIgGとの反応性以下に示すELISAで、ウサギIgGとの反応性を評価した。2-1RabbitIgG10μg/mLSigma社製の2倍希釈系列を作製後、当該希釈系列をELISAプレートに固定化し、1スキムミルクでブロッキングした。2-2Id-5またはId-14を産生するハイブリドーマの培養上清を0.1スキムミルクで100倍希釈したものをプレートに添加し反応させた。なおポジティブコントロールとして、抗ウサギ抗体を発現する細胞の培養上清を0.1スキムミルクで100倍希釈したものをプレートに添加し反応させた。2-3ALP標識抗マウスIgG抗体とプレート上で反応させた後、未反応のALP標識抗体をB/F分離し、基質である4-MUPを分注し、蛍光強度を測定することで検出した。結果を図4に示す。横軸に固相化したRabbitIgGの濃度、縦軸に蛍光強度Intensityをプロットした。ポジティブコントロールではRabbitIgGとの反応性が確認されたが、Id-5とId-14ではRabbitIgGに対する反応性を示さなかった。このことから、Id-5とId-14は抗E2ウサギモノクローナル抗体に対して特異的に反応する抗体であると考えられる。3ALP標識E2との競合能評価以下に示すELISAにより、Id-5またはId-14を発現する細胞の培養上清とALP標識E2との競合性能を評価した。3-1αRabbitIgG1μg/mLMillipore社製をELISAプレートに固定化後、1スキムミルクでブロッキングした。3-2ALP標識E2の濃度が一定の条件で、Id-5またはId-14を産生するハイブリドーマの培養上清希釈系列を作製し、抗E2ウサギモノクローナル抗体と同時にプレート上で反応させた。3-3未反応のALP標識E2をB/F分離後、基質である4-MUPを分注し、蛍光強度を測定することで検出した。結果を図5に示す。横軸に培養上清の希釈倍率、縦軸に蛍光強度Intensityをプロットした。Id-14が高濃度に存在すると、ALP標識E2と抗E2ウサギモノクローナル抗体との結合が阻害されることが示唆された。4Id-5とId-14の認識部位以下に示すELISAにより、Id-5とId-14の認識部位を評価した。4-1αRabbitIgG1μg/mLMillipore社製をELISAプレートに固定化後、1スキムミルクでブロッキングした。4-2抗E2ウサギモノクローナル抗体を添加しプレート上で反応後、Id-14希釈系列を添加しプレート上で反応させた。4-3ALP標識Id-5を添加しプレート上で反応後、B/F分離を行ない、基質である4-MUPを分注し、蛍光強度を測定することで検出した。結果を図6に示す。横軸にId-14濃度、縦軸に蛍光強度Intensityをプロットした。Id-14の濃度が高くなるに伴い、Id-5の抗E2ウサギモノクローナル抗体への結合が阻害されていることが分かる。この結果からId-5とId-14は抗E2ウサギモノクローナル抗体の近接部位を認識していることが示唆された。以上1から4の結果から、モノクローナル抗体Id-5は抗E2ウサギモノクローナル抗体の可変領域に対して特異的に結合するα型イディオタイプ抗体α-Idであることが示唆され、モノクローナル抗体Id-14は抗E2ウサギモノクローナル抗体のパラトープに結合してE2と競合するβ型抗イディオタイプ抗体β-Idであることが示唆された。実施例6α型β型抗イディオタイプ抗体を用いたE2測定系α-IdであるId-5、β-IdであるId-14、および抗E2ウサギモノクローナル抗体を用いて以下に示す方法でE2測定系を構築した。1抗E2ウサギモノクローナル抗体1μg/mLをELISAプレートに固定化後、1スキムミルクでブロッキングした。2E2の希釈系列をプレート上の抗体と反応させた後、Id-14をプレート上で反応させた。3ALP標識Id-5をプレート上の抗体と反応させ、B/F分離後、基質である4-MUPを分注し、蛍光強度を測定することで検出した。結果を図7に示す。横軸にE2濃度、縦軸には蛍光強度Intensityをプロットした。E2濃度の増加に伴い、蛍光強度が増加していることがわかる。このことから、Id-14が未反応の抗E2ウサギモノクローナル抗体のパラトープ付近を認識し結合することで、Id-5の抗E2ウサギモノクローナル抗体への結合を阻害したことが示唆された。以上の結果から、ウサギから取得した抗E2モノクローナル抗体と、ウサギとは動物種の異なるマウスから取得した抗イディオタイプ抗体α-Idおよびβ-Idとを用いることで、競合法によらないE2測定試薬を構築できることがわかる。"