以下のa~fのいずれかのポリヌクレオチドからなる高発現プロモーター:a配列番号1に示されるポリヌクレオチド:b上記のaのポリヌクレオチドに対して80以上の同一性を有し、かつ、クルイベロマイセスマルシアヌス及びそれ以外の少なくとも1種以上の酵母においてプロモーター活性を有するポリヌクレオチド:c配列番号2に示されるポリヌクレオチド:d上記のcのポリヌクレオチドに対して80以上の同一性を有し、かつ、クルイベロマイセスマルシアヌス及びそれ以外の少なくとも1種以上の酵母においてプロモーター活性を有するポリヌクレオチド:e配列番号3に示されるポリヌクレオチド:f上記のeのポリヌクレオチドに対して80以上の同一性を有し、かつ、クルイベロマイセスマルシアヌス及びそれ以外の少なくとも1種以上の酵母においてプロモーター活性を有するポリヌクレオチド。請求項1に記載の高発現プロモーターと、その制御下に作動可能に配置された目的遺伝子とを含む組換えポリヌクレオチド。請求項2に記載の組換えポリヌクレオチドを含むベクター。請求項2に記載の組換えポリヌクレオチド又は請求項3に記載のベクターを、酵母に導入して得られることを特徴とする形質転換体。酵母が、サッカロマイセス属酵母及びクルイベロマイセス属酵母からなる群から選択されるいずれかの酵母であることを特徴とする請求項4に記載の形質転換体。酵母が、サッカロマイセスセレビシエ及びクルイベロマイセスマルシアヌスから選択されるいずれかの酵母であることを特徴とする請求項4に記載の形質転換体。請求項4~6のいずれかに記載の形質転換体を培養する工程を含むことを特徴とする目的遺伝子の高発現方法。請求項4~6のいずれかに記載の形質転換体を培養する工程と、培養して得られた形質転換体から目的遺伝子産物を回収する工程とを含むことを特徴とする目的遺伝子産物の製造方法。本発明は、クルイベロマイセスマルシアヌス由来の新規な高発現プロモーターであるGAL1プロモーター、該高発現プロモーターを含む組換えポリヌクレオチド、該組換えポリヌクレオチドを含むベクター、該組換えポリヌクレオチド又は該ベクターを酵母に導入して得られる形質転換体、該形質転換体を用いた目的遺伝子の高発現方法、該形質転換体を用いた目的遺伝子産物の製造方法を提供することを目的とする。本発明者らは、鋭意研究を行った結果、クルイベロマイセスマルシアヌスからGAL1プロモーターを単離することに成功し、このプロモーターがクルイベロマイセスマルシアヌスにおいて目的遺伝子を顕著に高発現させ得ること、さらには、サッカロマイセスセレビシエにおいても目的遺伝子を高発現させ得ることを見い出し、本発明を完成するに至った。すなわち、本発明は、1a配列番号1に示されるポリヌクレオチド:b上記のaのポリヌクレオチドに対して80以上の同一性を有し、かつ、クルイベロマイセスマルシアヌス及びそれ以外の少なくとも1種以上の酵母においてプロモーター活性を有するポリヌクレオチド:c配列番号2に示されるポリヌクレオチド:d上記のcのポリヌクレオチドに対して80以上の同一性を有し、かつ、クルイベロマイセスマルシアヌス及びそれ以外の少なくとも1種以上の酵母においてプロモーター活性を有するポリヌクレオチド:e配列番号3に示されるポリヌクレオチド:及び、f上記のeのポリヌクレオチドに対して80以上の同一性を有し、かつ、クルイベロマイセスマルシアヌス及びそれ以外の少なくとも1種以上の酵母においてプロモーター活性を有するポリヌクレオチド:のいずれかのポリヌクレオチドからなる高発現プロモーターに関する。また、本発明は、2上記1に記載の高発現プロモーターと、その制御下に作動可能に配置された目的遺伝子とを含む組換えポリヌクレオチドに関する。さらに、本発明は、3上記2に記載の組換えポリヌクレオチドを含むベクターに関する。また、本発明は、4上記2に記載の組換えポリヌクレオチド又は上記3に記載のベクターを、酵母に導入して得られることを特徴とする形質転換体や、5酵母が、サッカロマイセス属酵母及びクルイベロマイセス属酵母からなる群から選択されるいずれかの酵母であることを特徴とする上記4に記載の形質転換体や、6酵母が、サッカロマイセスセレビシエ及びクルイベロマイセスマルシアヌスから選択されるいずれかの酵母であることを特徴とする上記4に記載の形質転換体に関する。さらに、本発明は、7上記4~6のいずれかに記載の形質転換体を培養する工程を含むことを特徴とする目的遺伝子の高発現方法に関する。また、本発明は、8上記4~6のいずれかに記載の形質転換体を培養する工程と、培養して得られた形質転換体から目的遺伝子産物を回収する工程とを含むことを特徴とする目的遺伝子産物の製造方法に関する。本発明の高発現プロモーターは、クルイベロマイセスマルシアヌスだけでなく、他の酵母においても、目的遺伝子を高発現させることができる。例えば、本発明の高発現プロモーターをサッカロマイセスセレビシエで用いると、サッカロマイセスセレビシエのGAL10プロモーターよりも目的遺伝子を高発現させることができる。したがって、本発明の高発現プロモーターを用いると、目的遺伝子産物を効率よく製造することも可能となる。1.本発明のプロモーター本発明の高発現プロモーターは、A配列番号1、2若しくは3に示されるポリヌクレオチドからなるか、又は、Bこれらのポリヌクレオチドの変異体であって、かつ、クルイベロマイセスマルシアヌス及びそれ以外の少なくとも1種以上の酵母においてプロモーター活性を有するポリヌクレオチドからなることを特徴とする。配列番号1に示されるポリヌクレオチドは、クルイベロマイセスマルシアヌス由来のGAL1プロモーターであり、配列番号2に示されるポリヌクレオチドは、クルイベロマイセスマルシアヌス由来のGAL7プロモーターであり、配列番号3に示されるポリヌクレオチドは、クルイベロマイセスマルシアヌス由来のGAL10プロモーターである。かかる本発明の高発現プロモーターは、クルイベロマイセスマルシアヌスだけでなく、他の酵母においても、目的遺伝子を高発現させることができる。上記Bの、配列番号1、2又は3に示されるポリヌクレオチドの変異体であって、かつ、クルイベロマイセスマルシアヌス及びそれ以外の少なくとも1種以上の酵母においてプロモーター活性を有するポリヌクレオチドからなるプロモーター以下、特に本発明の変異体プロモーターとも表示する。としては、a配列番号1、2又は3に示されるポリヌクレオチドに対して80以上、好ましくは85以上、より好ましくは90以上、さらに好ましくは95以上、最も好ましくは98以上の同一性を有し、かつ、クルイベロマイセスマルシアヌス及びそれ以外の少なくとも1種以上の酵母においてプロモーター活性を有するポリヌクレオチド:b配列番号1、2又は3に示されるポリヌクレオチドにおいて、1若しくは2個以上のヌクレオチドが欠失、置換若しくは付加されたポリヌクレオチドからなり、かつ、クルイベロマイセスマルシアヌス及びそれ以外の少なくとも1種以上の酵母においてプロモーター活性を有するポリヌクレオチド:c配列番号1、2又は3に示されるポリヌクレオチドに相補的なポリヌクレオチドとストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、かつ、クルイベロマイセスマルシアヌス及びそれ以外の少なくとも1種以上の酵母においてプロモーター活性を有するポリヌクレオチド:上記bにおける1若しくは2個以上のヌクレオチドが欠失、置換若しくは付加されたポリヌクレオチドとは、例えば1~20個、好ましくは1~15個、より好ましくは1~10個、さらに好ましくは1~5個の任意の数のヌクレオチドが欠失、置換若しくは付加されたポリヌクレオチドを意味する。上記cにおけるストリンジェントな条件下とは、いわゆる特異的なハイブリッドが形成され、非特異的なハイブリッドが形成されない条件をいい、具体的には、80以上、好ましくは85以上の同一性を有するDNA同士がハイブリダイズし、それより同一性が低いDNA同士がハイブリダイズしない条件あるいは通常のサザンハイブリダイゼーションの洗いの条件である65°C、1×SSC溶液1倍濃度のSSC溶液の組成は、150mM塩化ナトリウム、15mMクエン酸ナトリウム、0.1SDS、又は0.1×SSC、0.1SDSに相当する塩濃度でハイブリダイズする条件を挙げることができる。ハイブリダイゼーションは、モレキュラークローニング第2版等に記載されている方法に準じて行うことができる。上記cにおけるストリンジェントな条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチドとしては、プローブとして使用するポリヌクレオチドに相補的なポリヌクレオチドと一定以上の同一性を有するポリヌクレオチドが挙げることができ、例えば80以上、好ましくは85以上、より好ましくは90以上、さらに好ましくは95以上、最も好ましくは98以上の同一性を有するポリヌクレオチドを好適に例示することができる。なお、配列番号1に示されるポリヌクレオチドの758位~774位、779位~795位、804位~820位、825位~841位、860位~876位;配列番号2に示されるポリヌクレオチドの718位~734位、753位~769位、774位~790位、799位~815位、820位~836位;配列番号3に示されるポリヌクレオチドの939位~955位、954位~970位、988位~1004位;は、それぞれ、転写因子であるGAL4の結合部位である。上記Aの配列番号1、2若しくは3に示されるポリヌクレオチドは、そのヌクレオチド配列が明らかとなったので、例えば、鋳型としてクルイベロマイセスマルシアヌスのゲノムDNAを用い、該ヌクレオチド配列に基づいて合成したオリゴヌクレオチドをプライマーに用いるPCR反応によって、または該ヌクレオチド配列に基づいて合成したオリゴヌクレオチドをプローブとして用いるハイブリダイゼーションによっても得ることができる。なお、染色体DNAは、常法例えば、特開2008-237024号公報に開示された方法により取得できる。オリゴヌクレオチドの合成は、例えば、市販されている種々のDNA合成機を用いて常法に従って合成できる。また、PCR反応は、アプライドバイオシステムズ社AppliedBiosystems製のサーマルサイクラーGeneAmpPCRSystem2400を用い、TaqDNAポリメラーゼタカラバイオ社製やKOD-Plus-東洋紡績社製などを使用して常法に従って行なうことができる。また、前述の本発明の変異体プロモーターにおけるポリヌクレオチドの変異体は、化学合成、遺伝子工学的手法、突然変異誘発などの当業者に既知の任意の方法により作製することもできる。具体的には、配列番号1、2又は3に示されるポリヌクレオチドに対し、変異原となる薬剤と接触作用させる方法、紫外線を照射する方法、遺伝子工学的な手法等を用いて、これらポリヌクレオチドに変異を導入することにより、ポリヌクレオチドの変異体を取得することができる。遺伝子工学的手法の一つである部位特異的変異誘発法は特定の位置に特定の変異を導入できる手法であることから有用であり、モレキュラークローニング第2版、CurrentProtocolsinMolecularBiologySupplement1~38JohnWileySons等に記載の方法に準じて行うことができる。本発明の高発現プロモーターは、クルイベロマイセスマルシアヌス及びそれ以外の少なくとも1種以上の酵母においてプロモーター活性を有する。あるポリヌクレオチドがある酵母においてプロモーター活性を有するかどうかは、例えばそのポリヌクレオチドの下流にレポーター遺伝子を作動可能に連結した組換えポリヌクレオチドを作製する工程、その組換えポリヌクレオチドをその酵母に形質転換して形質転換酵母を得る工程、その形質転換酵母におけるそのレポーター遺伝子の発現の程度を測定する工程を含む周知のレポーターアッセイ等により容易に確認することができる。上記のクルイベロマイセスマルシアヌス及びそれ以外の少なくとも1種以上の酵母におけるクルイベロマイセスマルシアヌス以外の酵母としては、クルイベロマイセスマルシアヌス以外の種類の酵母である限り、特に制限されず、クルイベロマイセスラクティス等の、クルイベロマイセスマルシアヌス以外のクルイベロマイセス属酵母;サッカロマイセスセレビシエ等のサッカロマイセス属酵母;カンジダアルビカンス等のカンジダ属酵母;ジゴサッカロマイセスロキシー等のジゴサッカロマイセス属酵母;シゾサッカロマイセスポンベ等のシゾサッカロマイセス属酵母;ピキアパストリス等のピキア属酵母;などを好適に例示することができ、中でも、クルイベロマイセスラクティス等の、クルイベロマイセスマルシアヌス以外のクルイベロマイセス属酵母;サッカロマイセスセレビシエ等のサッカロマイセス属酵母;をより好適に例示することができ、中でも、サッカロマイセスセレビシエ等のサッカロマイセス属酵母をさらに好適に例示することができ、サッカロマイセスセレビシエを特に好適に例示することができる。本発明の高発現プロモーターや、後述の本発明の目的遺伝子の高発現方法おける高発現や、後述の本発明の目的遺伝子産物の製造方法における高効率には、X宿主がクルイベロマイセスマルシアヌスの場合については、かかるプロモーターの下流に、分泌型ルシフェラーゼCLuc遺伝子を作動可能に連結した組換えポリヌクレオチドをクルイベロマイセスマルシアヌスに導入して得られた形質転換体を、YPGal液体培地1質量酵母エキス、2質量ポリペプトン、2質量ガラクトースにて28°C、48時間振盪培養したときの培養液中の分泌型ルシフェラーゼCLucの相対発現量RLU/ODμlが、25000以上、好ましくは28000以上、より好ましくは32000以上、さらに好ましくは34000以上であることや、Y宿主がクルイベロマイセスマルシアヌス以外の酵母好適にはサッカロマイセスセレビシエである場合については、かかるプロモーターの下流に、分泌型ルシフェラーゼCLuc遺伝子を作動可能に連結した組換えポリヌクレオチドをその酵母に導入して得られた形質転換体を、YPGal液体培地1質量酵母エキス、2質量ポリペプトン、2質量ガラクトースにて28°C、48時間振盪培養したときの培養液中の分泌型ルシフェラーゼCLucの相対発現量RLU/ODμlが、1500以上、好ましくは2000以上、より好ましくは2500以上、さらに好ましくは3000以上であることを好適に含み、さらには、上記Xであり、かつ、上記Yであることをより好適に含む。本発明の高発現プロモーターや、後述の本発明の目的遺伝子の高発現方法おける高発現や、後述の本発明の目的遺伝子産物の製造方法における高効率の他の例としては、かかるプロモーターの下流に、分泌型ルシフェラーゼCLuc遺伝子を作動可能に連結した組換えポリヌクレオチドをクルイベロマイセスマルシアヌスに導入して得られた形質転換体を、YPGal液体培地1質量酵母エキス、2質量ポリペプトン、2質量ガラクトースにて28°C、48時間振盪培養したときの培養液中の分泌型ルシフェラーゼCLucの相対発現量RLU/ODμlが、サッカロマイセスセレビシエのGAL10プロモーターの下流に、分泌型ルシフェラーゼCLuc遺伝子を作動可能に連結した組換えポリヌクレオチドをサッカロマイセスセレビシエに導入して得られた形質転換体を、YPGal液体培地1質量酵母エキス、2質量ポリペプトン、2質量ガラクトースにて28°C、48時間振盪培養したときの培養液中の分泌型ルシフェラーゼCLucの相対発現量RLU/ODμlに対して、割合として、10倍以上、好ましくは20倍以上、さらに好ましくは30倍以上、さらにより好ましくは40倍以上、最も好ましくは50倍以上であることを好適に含む。本発明の高発現プロモーターや、後述の本発明の目的遺伝子の高発現方法おける高発現や、後述の本発明の目的遺伝子産物の製造方法における高効率のさらなる他の例としては、かかるプロモーターの下流に、分泌型ルシフェラーゼCLuc遺伝子を作動可能に連結した組換えポリヌクレオチドをクルイベロマイセスマルシアヌスに導入して得られた形質転換体を、YPGal液体培地1質量酵母エキス、2質量ポリペプトン、2質量ガラクトースにて28°C、48時間振盪培養したときの培養液中の分泌型ルシフェラーゼCLucの相対発現量RLU/ODμlが、該組換えポリヌクレオチドをサッカロマイセスセレビシエに導入して得られた形質転換体を、YPGal液体培地1質量酵母エキス、2質量ポリペプトン、2質量ガラクトースにて28°C、48時間振盪培養したときの培養液中の分泌型ルシフェラーゼCLucの相対発現量RLU/ODμlに対して、割合として、2倍以上、好ましくは3倍以上、さらに好ましくは4倍以上、最も好ましくは5倍以上であることを好適に含む。本発明におけるポリヌクレオチドとしては、相補的な二本鎖ポリヌクレオチドを好適に例示することができ、中でも相補的な二本鎖DNAを特に好適に例示することができる。2.本発明の組換えポリヌクレオチド本発明の組換えポリヌクレオチドは、本発明の高発現プロモーターと、その制御下に作動可能に配置された目的遺伝子とを含むことを特徴とする。本発明の組換えポリヌクレオチドは、本発明の高発現プロモーターの活性化を通じて、その目的遺伝子がコードする目的遺伝子産物タンパク質やペプチドをガラクトース誘導的に高発現させることができる。本発明において、本発明の高発現プロモーターの制御下に作動可能に配置された目的遺伝子とは、本発明の高発現プロモーターに転写因子が結合することにより、その目的遺伝子の発現が誘導されるように、本発明の高発現プロモーターと、その目的遺伝子とが連結されていることを意味する。上記目的遺伝子としては、任意の遺伝子であればよいが、なんらかの有用なタンパク質をコードする有用タンパク質遺伝子を好適に例示することができる。有用タンパク質遺伝子としては、セルラーゼ遺伝子、アミラーゼ遺伝子等の糖化酵素遺伝子や、ウイルスワクチンタンパク質の遺伝子を好適に例示することができる。3.本発明の組換えポリヌクレオチドを含むベクター本発明の組換えポリヌクレオチドを含むベクターは、上記の本発明の組換えポリヌクレオチドを含むことを特徴とする。本発明のベクターは、宿主酵母において、本発明の組換えポリヌクレオチドを保持したり、目的遺伝子を発現させるために酵母を形質転換したりすることができる。本発明におけるベクターは、直鎖状であってもよいし、環状であってもよい。宿主酵母がクルイベロマイセスマルシアヌスである場合は、直鎖状のベクターであっても染色体上において高頻度で組換えを生じさせることができ、その結果、形質転換することができる。また、環状のベクターの場合、さらに自己複製配列を含んでいれば、該ベクターは酵母細胞内にて自律複製し、酵母細胞内で保持され、その結果、形質転換することができる。上記ベクターは、酵母細胞内で目的遺伝子を発現させることが可能であるものである限り特に制限されず、環状のプラスミドベクターとしては、例えばpKD1等を好適に例示することができる。4.本発明の形質転換体本発明の形質転換体は、本発明の組換えポリヌクレオチド、又は、本発明のベクターを、酵母に導入して得られることを特徴とする。本発明の形質転換体は、その細胞内で目的遺伝子をガラクトース誘導的に高発現することができ、本発明の形質転換体を培養することによって、目的遺伝子産物を効率的に生成させることができる。本発明の形質転換体を作製する際に用いる酵母の種類としては、特に制限されず、クルイベロマイセスマルシアヌス、クルイベロマイセスラクティス等のクルイベロマイセス属酵母;サッカロマイセスセレビシエ等のサッカロマイセス属酵母;カンジダアルビカンス等のカンジダ属酵母;ジゴサッカロマイセスロキシー等のジゴサッカロマイセス属酵母;シゾサッカロマイセスポンベ等のシゾサッカロマイセス属酵母;ピキアパストリス等のピキア属酵母;などを好適に例示することができ、中でも、クルイベロマイセスマルシアヌス、クルイベロマイセスラクティス等のクルイベロマイセス属酵母;サッカロマイセスセレビシエ等のサッカロマイセス属酵母;をより好適に例示することができ、中でも、目的遺伝子の発現量が特に高く、目的遺伝子産物の生成効率が特に高い点で、クルイベロマイセスマルシアヌスを特に好適に例示することができる。また、クルイベロマイセスマルシアヌスは、耐熱性を有しているため、発酵熱を冷却する設備やエネルギーコストを必要とせずに、効率的なエタノール発酵が可能となる点で好ましい。本発明の組換えポリヌクレオチド、又は、本発明のベクターの酵母への導入方法としては、特に制限されず、ウイルスベクターを利用する方法、特異的受容体を利用する方法、細胞融合法等の生物学的方法;エレクトロポレーション法、マイクロインジェクション法、遺伝子銃法、超音波遺伝子導入法等の物理的方法;リポフェクション法、リン酸カルシウム共沈殿法、リポソーム法、DEAEデキストラン法等の化学的方法;などの公知の方法を例示することができ、中でも簡便であって汎用性が高い点でリポフェクション法を好適に例示することができる。また、本発明の組換えポリヌクレオチド、又は、本発明のベクターがその酵母へ導入されたかどうかは、目的遺伝子として、又は、目的遺伝子に加えて、マーカー遺伝子を本発明の組換えポリヌクレオチドや本発明のベクターにマーカー遺伝子を挿入しておき、形質転換体におけるそのマーカー遺伝子の発現を確認するなどして容易に確認することができる。5.本発明の目的遺伝子の高発現方法本発明の目的遺伝子の高発現方法は、本発明の形質転換体を培養する工程を含むことを特徴とする。本発明の形質転換体を培養する方法としては、その形質転換体が増殖し得る限り特に制限されないが、例えばその形質転換体が増殖可能な温度条件下例えば25~33°C、好ましくは28~30°C、YPD培地1質量酵母エキス、2質量ポリペプトン、2質量グルコースにて、適当な時間例えば1~10日間、好ましくは1~5日間、より好ましくは1~3日間、振盪培養する方法を好適に例示することができる。6.本発明の目的遺伝子産物の製造方法本発明の目的遺伝子産物の製造方法は、本発明の形質転換体を培養する工程と、培養して得られた形質転換体から目的遺伝子産物を回収する工程とを含むことを特徴とする。かかる製造方法によれば、目的遺伝子産物を高効率で製造することができる。培養して得られた形質転換体から目的遺伝子産物を回収する方法としては、目的遺伝子産物を回収し得る限り特に制限されず、クロマトグラフィーを利用した方法、タグを利用した方法などの公知の方法を例示することができる。[クルイベロマイセスマルシアヌスからのKmGAL1プロモーターの単離]本発明者らは、クルイベロマイセスマルシアヌスDMKU31042株のゲノム配列をGenomeSequencerFLXSystemロシュダイアグノスティクス社でドラフトゲノム配列を取得した。しかし、1回目のシーケンスでは、GALの部分配列しか得られなかった。そこで、さらに高性能なGenomeSequencerFLXTitaniumロシュダイアグノスティクス社を用いることによって、ようやくドラフトゲノム配列を取得することができた。本発明者らは、クルイベロマイセスマルシアヌスからガラクトース誘導性プロモーターを取得するために、サッカロマイセスセレビシエ由来の公知のGAL1、GAL10、GAL7などの配列情報に基づいて、クルイベロマイセスマルシアヌスのドラフトゲノム配列の検索を行った。その結果、クルイベロマイセスマルシアヌスのドラフトゲノム配列中に、サッカロマイセスセレビシエ由来のGALプロモーターと比較的高い同一性を有する配列を見い出し、その配列を単離した。単離したこの配列のプロモーター構造を図1に示す。図1に示されるように、GAL1プロモーターとは逆向きに、GAL10プロモーター、GAL7プロモーターが配置されており、GAL1プロモーターとGAL10プロモーターの間にGAL4結合部位が見い出された。なお、クルイベロマイセスマルシアヌスにおけるこれらのGAL1プロモーターKmGAL1プロモーター、GAL10プロモーターKmGAL10プロモーター、GAL7プロモーターKmGAL1プロモーターの配置は、サッカロマイセスセレビシエのこれらのプロモーターの既知の配置と同様であった。なお、今回単離した配列中のGAL1様プロモーターを用いた後述の実施例2や実施例3の実験により、今回単離したクルイベロマイセスマルシアヌス由来のGALプロモーター群は、GALプロモーターであることが示された。[KmGAL1プロモーターの部位の特定]KmGAL1プロモーターの部位を特定するために、以下のような発現解析試験をおこなった。まず、KmGAL1プロモーターを含むと考えられる1.4kbのDNA配列図2のKmGAL1プロモーター構造の-1400~0に相当する配列を用意し、KmGAL1-1400と命名した。次に、KmGAL1-1400の5’末端を200base欠失させたDNA配列図2のKmGAL1プロモーター構造の-1200~0に相当する配列を用意し、KmGAL1-1200と命名した。同様に、KmGAL1-1400の5’末端を400base欠失させたDNA配列図2のKmGAL1プロモーター構造の-1000~0に相当する配列を用意し、KmGAL1-1000と命名した。同様に、KmGAL1-1400の5’末端を580base欠失させたDNA配列図2のKmGAL1プロモーター構造の-820~0に相当する配列を用意し、KmGAL1-820と命名した。同様に、KmGAL1-1400の5’末端を625base欠失させたDNA配列図2のKmGAL1プロモーター構造の-775~0に相当する配列を用意し、KmGAL1-775と命名した。同様に、KmGAL1-1400の5’末端を650base欠失させたDNA配列図2のKmGAL1プロモーター構造の-750~0に相当する配列を用意し、KmGAL1-750と命名した。同様に、KmGAL1-1400の5’末端を800base欠失させたDNA配列図2のKmGAL1プロモーター構造の-600~0に相当する配列を用意し、KmGAL1-600と命名した。同様に、KmGAL1-1400の5’末端を1000base欠失させたDNA配列図2のKmGAL1プロモーター構造の-400~0に相当する配列を用意し、KmGAL1-400と命名した。同様に、KmGAL1-1400の5’末端を1200base欠失させたDNA配列図2のKmGAL1プロモーター構造の-200~0に相当する配列を用意し、KmGAL1-200と命名した。分泌型ルシフェラーゼCLuc遺伝子がGAL1プロモーターの下流に作動可能に連結してあるテンプレート、及び、前述のKmGAL1-1400等の9種類のDNA配列を利用してPCR合成した。これにより、前述のKmGAL1-1400等の9種類のDNA配列のそれぞれの下流に、分泌型ルシフェラーゼCLuc遺伝子が作動可能に連結された、KmGAL1-1400-CLuc等の9種類の組換えDNAを得た。得られた9種類の組換えDNAを、それぞれクルイベロマイセスマルシアヌスに導入し、それぞれについて形質転換体を合計9種類得た。その9種類1種類につき2クローンずつの形質転換体をYPD液体培地1質量酵母エキス、2質量ポリペプトン、2質量グルコースにて28°C、48時間振盪培養した後、各種の形質転換体につき、培養液5μlをサンプル採取し、分泌型ルシフェラーゼCLucの相対発現量RLU:RelativeLuciferaseUnitを測定した。また、YPD液体培地に代えて、YPGal液体培地1質量酵母エキス、2質量ポリペプトン、2質量ガラクトースを用いて同様の振盪培養を行い、分泌型ルシフェラーゼCLucの相対発現量を測定した。これらの結果を図3に示す。なお、KmGAL1-1400等のプロモーター名のところに2本ずつ記載された棒グラフのうち、左側はYPD液体培地グルコース培地を用いた場合における、2クローンの平均値を示し、右側はYPGal液体培地ガラクトース培地を用いた場合における、2クローンの平均値を示す。図3の結果から分かるように、KmGAL1-1400、KmGAL1-1200、KmGAL1-1000、KmGAL1-820、KmGAL1-775を用いた場合は、CLucの相対発現量、及び、培地中のガラクトースによる誘導率のいずれもきわめて高かったが、KmGAL1-750、KmGAL1-600、KmGAL1-400、KmGAL1-200を用いた場合は、KmGAL1-1400等を用いた場合と比較して、CLucの相対発現量がかなり低下した。この結果から、図2のKmGAL1プロモーター構造の-775~750に相当する部分がプロモーター活性に特に重要であることが示され、KmGAL1プロモーターの部位が特定された。なお、本明細書中の活性量は相対発現量と同義である。[KmGAL1プロモーターの発現解析]KmGAL1プロモーターが、クルイベロマイセスマルシアヌスにおいて目的遺伝子をどの程度発現させることができるのか、及び、クルイベロマイセスマルシアヌス以外の酵母において目的遺伝子をどの程度発現させることができるのかを調べるために、以下のような発現解析試験をおこなった。まずは、URA3-5’40-KmGAL10c2プライマー配列番号4及び15GKmGAL122cプライマー配列番号5と、クルイベロマイセスマルシアヌス由来の染色体ゲノムを用いたPCRにより、KmGAL1プロモーターKmGAL1pの配列を得た。次に、以下の4つの形質転換体を、公知の形質転換法により、作製した。1KmGAL1pの下流に、分泌型ルシフェラーゼCLuc遺伝子を作動可能に連結したKmGAL1p-CLucをクルイベロマイセスマルシアヌスに導入して得られた形質転換体図4の右端のKmGAL1p。2サッカロマイセスセレビシエ由来のGAL10プロモーターの下流に、分泌型ルシフェラーゼCLuc遺伝子を作動可能に連結したScGAL10p-CLucをクルイベロマイセスマルシアヌスに導入して得られた形質転換体図4の右から2番目のScGAL10p。3KmGAL1p-CLucをサッカロマイセスセレビシエに導入して得られた形質転換体図4の右から3番目のKmGAL1p。4ScGAL10p-CLucをサッカロマイセスセレビシエに導入して得られた形質転換体図4の左端のScGAL10p。これらの各形質転換体を、それぞれYPD液体培地1質量酵母エキス、2質量ポリペプトン、2質量グルコースにて28°C、48時間振盪培養した後、各種の形質転換体につき、培養液5μlをサンプル採取し、分泌型ルシフェラーゼCLucの相対発現量RLU/ODμlを測定した。また、YPD液体培地に代えて、YPGal液体培地1質量酵母エキス、2質量ポリペプトン、2質量ガラクトースを用いて同様の振盪培養を行い、分泌型ルシフェラーゼCLucの相対発現量を測定した。これらの結果を図4に示す。なお、KmGAL1p等のプロモーター名のところに2本ずつ記載された棒グラフのうち、左側はYPD液体培地グルコース培地を用いた場合における、2クローンの平均値を示し、右側はYPGal液体培地ガラクトース培地を用いた場合における、2クローンの平均値を示す。図4の結果から分かるように、KmGAL1プロモーターは、サッカロマイセスセレビシエにおいてもガラクトース誘導的に発現すること、しかもKmGAL1プロモーターをサッカロマイセスセレビシエにおいて用いた場合のCLucの相対発現量RLU/ODμlガラクトース誘導下が、ScGAL10プロモーターを用いた場合と比較して、割合として、約5倍にも上昇していた。一般的には、宿主の属する種とは異なる種に属する生物から単離したプロモーターが、その宿主においてプロモーターとして機能しないことの方が多い。しかも、宿主由来のプロモーターを超える発現量をその他の生物のプロモーターが発揮することは通常無い。したがって、クルイベロマイセスマルシアヌス由来のGAL1プロモーターが、サッカロマイセスセレビシエにおいて、サッカロマイセスセレビシエ由来のGAL10プロモーターよりも5倍もの高い発現性を示したことは稀な現象であるといえる。さらに、KmGAL1プロモーターをクルイベロマイセスマルシアヌスにおいて用いた場合のCLucの相対発現量RLU/ODμlガラクトース誘導下は、ScGAL10プロモーターをサッカロマイセスセレビシエにおいて用いた場合のCLuc相対発現量ガラクトース誘導下と比較して、割合として50倍以上にも上昇していた。このことから、KmGAL1プロモーターが有するこの高発現性は、顕著であるといえる。