a2.0MのKClを含有するYPD培地で生育可能であり、b糖分15ww、灰分5~6wwを含有する廃糖蜜希釈液を原料として、培養温度40°Cで7~10vvのエタノールを生産し、cグルコース5含有YPD培地にて35°Cで12時間攪拌培養後、攪拌を停止してから1分以内に凝集沈降することを特徴とする酵母。糖分15ww、灰分5~6wwを含有する廃糖蜜希釈液を原料として、培養温度38°Cで8回以上の繰り返し回分培養が可能であることを特徴とする請求項1に記載の酵母。糖分15ww、灰分5~6wwを含有する廃糖蜜希釈液を原料として、培養温度40°Cで4回以上の繰り返し回分培養が可能であることを特徴とする請求項1または2に記載の酵母。サッカロミセスセレビシエに属することを特徴とする請求項1~3のいずれかに記載の酵母。サッカロミセスセレビシエBA11株受託番号NITEBP-793またはサッカロミセスセレビシエBA16株受託番号NITEBP-794である請求項4に記載の酵母。請求項1~5のいずれかに記載の酵母を用いることを特徴とするエタノール製造方法。廃糖蜜を含有する原料を用いることを特徴とする請求項6に記載のエタノール製造方法。本発明は、高い耐塩性を有し、さらに高いエタノール生産性、耐熱性、エタノール耐性、凝集沈降性を有する酵母を提供するとともに、当該酵母を用いるエタノール製造方法を提供することを目的とする。本発明は、上記の課題を解決するために以下の発明を包含する。[1]a2.0MのKClを含有するYPD培地で生育可能であり、b糖分15ww、灰分5~6wwを含有する廃糖蜜希釈液を原料として、培養温度40°Cで7~10vvのエタノールを生産し、cグルコース5含有YPD培地にて35°Cで12時間攪拌培養後、攪拌を停止してから1分以内に凝集沈降することを特徴とする酵母。[2]糖分15ww、灰分5~6wwを含有する廃糖蜜希釈液を原料として、培養温度38°Cで8回以上の繰り返し回分培養が可能であることを特徴とする前記[1]に記載の酵母。[3]糖分15ww、灰分5~6wwを含有する廃糖蜜希釈液を原料として、培養温度40°Cで4回以上の繰り返し回分培養が可能であることを特徴とする前記[1]または[2]に記載の酵母。[4]サッカロミセスセレビシエに属することを特徴とする前記[1]~[3]のいずれかに記載の酵母。[5]サッカロミセスセレビシエBA11株受託番号NITEBP-793またはサッカロミセスセレビシエBA16株受託番号NITEBP-794である前記[4]に記載の酵母。[6]前記[1]~[5]のいずれかに記載の酵母を用いることを特徴とするエタノール製造方法。[7]廃糖蜜を含有する原料を用いることを特徴とする前記[6]に記載のエタノール製造方法。本発明により、高い耐塩性、高いエタノール生産性、耐熱性、エタノール耐性、凝集沈降性を有する酵母、および当該酵母を用いるエタノール製造方法を提供することができる。本発明の酵母を用いれば、発酵収率が向上するとともに冷却水の低減や蒸留エネルギーを低減することができ、さらに酵母の遠心分離工程を省略できるので、バイオエタノールの製造コストを大幅に低減することが可能となる。また、塩含有量の高い廃糖蜜等を原料として効率よくエタノールを生産することができるので、原料コストを大幅に低減することが可能となる。酵母本発明の酵母は、以下のa、b、cの特性を有するものであればよい。a2.0MのKClを含有するYPD培地で生育できる。b糖分15ww、灰分5~6wwを含有する廃糖蜜希釈液を原料として、培養温度40°Cで7~10vvのエタノールを生産する。cグルコース5含有YPD培地にて35°Cで12時間攪拌培養後、攪拌を停止してから1分以内に凝集沈降する。本発明の酵母は、さらに以下のd、eの特性を有することが好ましい。d糖分15ww、灰分5~6wwを含有する廃糖蜜希釈液を原料として、培養温度38°Cで8回以上の繰り返し回分培養が可能である。e糖分15ww、灰分5~6wwを含有する廃糖蜜希釈液を原料として、培養温度40°Cで4回以上の繰り返し回分培養が可能である。上記aの特性を有することは、例えば、2.0MのKClを含有するYPD寒天培地に酵母を接種し、約35°Cで約24時間培養することで確認できる。具体的には、2.0MとなるようにKClを添加したYPD寒天培地酵母エキス1wv、ペプトン2wv、グルコース2wv、寒天1.5~2wvを作製し、これに酵母を接種して約35°Cに設定した恒温器中で約24時間静置した後に、酵母の増殖の有無を確認すればよい。上記bの特性を有することは、糖分15ww、灰分5~6wwを含有する廃糖蜜希釈液に酵母を加えて培養温度40°Cで培養し、培養液中のエタノール濃度を測定することで確認できる。ここで、廃糖蜜はサトウキビなどの原料糖から粗糖を搾り出した後の粘状黒褐色の液体であり、廃糖蜜を水で希釈することにより廃糖蜜希釈液を調製することができる。糖分および灰分は、公知の方法により測定することができる。糖分の測定方法としては、例えば、高速液体クロマトグラフィー法が挙げられ、灰分の測定方法としては、例えば、廃糖蜜を約600°Cで加熱して灰化させ、その重量を測定する方法が挙げられる。エタノール濃度は、例えば、ガスクロマトグラフィー法等の公知の方法で測定することができる。培養温度が40°Cであること以外の培養条件は限定されない。以下に、培養方法の一例を示すが、限定されるものではない。1前培養;500mlバッフル付三角フラスコを用いて、5グルコースを含むYPD培地100mLに凍結保存酵母株例えば、15グリセロール中で-80°C保存した酵母株を2白金耳分植菌し、38°C、170rpmで24時間振盪培養する。続いて、5グルコース含有YPD培地3Lを入れた5Lジャーファーメンターに、培養液の全量を投入し、38°C、200rpm撹拌、0.5VVM通気の条件で24時間培養する。本培養;100L酒母槽に、糖分10wwとなるように水で希釈した廃糖蜜希釈液最終濃度0.8の硫安添加したもの60Lを入れ、その中に前培養液3Lを投入し、38°C、20HZ撹拌、0.5VVM通気の条件下で24時間培養する。3発酵;10000L発酵槽に糖分15ww、灰分5~6wwとなるように水で希釈した廃糖蜜最終濃度0.8の硫安添加したもの4275Lを入れ、その中に214Lの上記培養菌体液を投入し、40°C、緩速撹拌150rpm、通気循環量15m3hr条件下で17時間培養する。上記cの特性を有することは、グルコース5含有YPD培地に酵母を接種し、35°Cで12時間攪拌培養を行った後に攪拌を停止することで確認することができる。具体的には、200mLのフラスコに100mLのグルコース5含有YPD培地酵母エキス1wv、ペプトン2wv、グルコース5wvを入れ、酵母を接種約0.5白金字耳して35°C、150rpmで撹拌培養を行い、培養開始12時間経過後に撹拌を停止する。ビーカー、メスシリンダー等の適当な容器に培養物を移して静置し、その1分後に、凝集沈降した菌体層と濁りのない液層とが分離していることを確認すればよい。上記dの特性を有することは、糖分15ww、灰分5~6wwを含有する廃糖蜜希釈液に酵母を添加して培養温度38°Cで回分培養し、これを8回以上繰り返すことで確認することができる。一回の培養ごとに新たな培地を準備し、培養終了まで培地を加えない培養方法を回分培養という。繰り返し回分培養は、酵母の凝集沈降性を利用して、培養終了後に遠心分離を行うことなく酵母と上清もろみとを分離し、分離した酵母に新たな培地を添加して次の培養を行う培養方法である。8回以上の繰り返し回分培養が可能であるとは、8回以上の繰り返し回分培養を行ってもエタノール生産性が低下しない状態を維持できることをいう。エタノール生産性が低下しない状態とは、その回のエタノール生産量が、前回以前における最もエタノール生産量が高い回の70以上であることを基準とする。具体的には、廃糖蜜を水で希釈することにより、規定の糖分および灰分を含有する廃糖蜜希釈液を調製し、適当な培養容器を用いて酵母を添加して38°Cで培養する。培養終了後酵母を凝集沈降させて上清もろみを回収し、分離した酵母に新たに廃糖蜜希釈液を添加して2回目の培養を開始する。これを8回以上繰り返し、各回の回収した上清中のエタノール濃度を測定して、エタノール生産性が低下しない状態を維持していることを確認する。上記eの特性を有することは、糖分15ww、灰分5~6wwを含有する廃糖蜜希釈液に酵母を添加して培養温度40°Cで回分培養し、これを4回以上繰り返すことで確認することができる。具体的には、上記dの特性を確認する方法において、培養温度を40°Cに変更し、繰り返し回数を4回以上に変更すればよい。本発明の酵母としては、例えば、子嚢菌門のSaccharomyces属、Candida属、Torulopsis属、Zygosaccharomyces属、Schizosaccharomyces属、Pichia属、Yarrowia属、Hansenula属、Kluyveromyces属、Debaryomyces属、Geotrichum属、Wickerhamia属、Fellomyces属、Sporobolomyces属に属するものが挙げられ、なかでもSaccharomycesサッカロミセス属に属するものが好ましく、特に好ましくはSaccharomycescerevisiaeサッカロミセスセレビシエである。本発明の酵母は、天然の酵母または公知の育種方法例えば、突然変異誘導法、細胞融合法、性的接合法などによって作出した酵母についてスクリーニングを行い、上記a、bおよびcの特性を有するものを選択することにより取得することができる。このような酵母として、本発明者が突然変異誘導法により作出したサッカロミセスセレビシエBA11株、および、細胞融合法により作出したサッカロミセスセレビシエBA16株が挙げられる。サッカロミセスセレビシエBA11株受託番号NITEBP-793、および、サッカロミセスセレビシエBA16株受託番号NITEBP-794は、それぞれ独立行政法人製品評価技術基盤機構特許微生物寄託センター〒292-0818日本国千葉県木更津市かずさ鎌足2-5-8に国際寄託済みである受託日:2009年8月11日。エタノール製造方法本発明のエタノール製造方法は、上記本発明の酵母を用いるものであればよい。したがって、エタノール製造における個々の具体的な工程は特に限定されない。例えば、非特許文献1、非特許文献2等に記載された公知のバイオエタノールの製造方法から使用する原料等に応じて適宜選択し、使用することができる。本発明のエタノール製造方法に使用する酵母は、高いエタノール生産性を有するので、どのような原料を用いても効率よくエタノールを生産することができる。例えば、サトウキビ、テンサイ、サトウキビ由来の廃糖蜜等の糖質原料;トウモロコシ、ジャガイモ、サツマイモ、イネ、ムギ類等のデンプン質原料;セルロース系バイオマスなどを好適に用いることができるが、これらに限定されるものではない。本発明のエタノール製造方法に使用する酵母は、高い耐塩性を有するので、塩濃度の高い原料を好適に用いることができる。塩濃度の高い原料としては、サトウキビ由来の廃糖蜜が挙げられる。サトウキビ由来の廃糖蜜中の塩濃度は、産地、粗糖の回収状態等によって異なるが、例えば本発明者が使用した沖縄産サトウキビから粗糖を3回回収した後の廃糖蜜の分析結果によれば、マグネシウムイオン濃度が0.7~1.1ww、カリウムイオン濃度が5.6~9.4ww、カルシウム濃度が1.1~1.8wwであり、灰分濃度として約15~20wwを含有しているものであった。本発明のエタノール製造方法によれば、本来エタノール発酵用としては利用価値の低いサトウキビ由来の廃糖蜜を原料として利用できるので、原料コストを低減することが可能となる。本発明のエタノール製造方法に使用する酵母は、優れた耐熱性を有するので、発酵工程を38~40°C程度の高温で行うことができる。従来株は耐熱性が低いため30~33°Cで発酵工程を行う必要があり、そのため、冷却施設チラーを用いて発酵槽を冷却することが必須であった。本発明のエタノール製造方法によれば、夏季においても地下水等で冷却するだけで十分であるため、冷却のための電力コストを大幅に節約することが可能となる。冷却コストの削減は熱帯亜熱帯地域でのエタノール生産に特に顕著である。さらに、セルロース原料をセルラーゼによって糖化する場合、温度が高いほどセルラーゼの活性が高いので、本発明の酵母は、糖化とエタノール発酵を同時に行わせるエタノール製造方法に好適に使用することができる。本発明のエタノール製造方法に使用する酵母は、優れたエタノール耐性、凝集沈降性を有するので、本発明のエタノール製造方法において繰り返し回分培養法繰り返し回分発酵法ともいう。を好適に採用することができる。繰り返し回分培養法を採用することにより、酵母の遠心分離工程を省略でき、もろみを抜き取り、原料を追加するだけで、直ちに次の発酵サイクルを開始することができる。更に毎回酒母を作る必要がないので、製造コストを大幅に低減することが可能となる。以下、実施例により本発明を詳細に説明するが、本発明はこれらに限定されるものではない。実施例1:サッカロミセスセレビシエBA11株の作製バイオアカデミア株式会社保存株のうちアルコール耐性、高温耐性、凝集沈降性に優れたサッカロミセスセレビシエBA6株に対して、公知の突然変異誘導法大嶋泰治編、酵母の分子遺伝学実験法、学会出版センター、1996年に従い、EMSエチルメタンスルフォネート処理を加え、菌体を0.1M燐酸緩衝液pH7.0で洗浄後、高耐塩性、耐熱性を有する株を選択する目的で1.2MKClを含むYPD培地酵母エキス10g、ポリペプトン20g、グルコース20g、水1000mL中、42°Cの培養温度で液体培地および寒天培地でスクリーニングした。最終的にグルコース20と1.2MKClを含むYPD培地で培養し、エタノール発酵性発酵速度および残糖、凝集沈降性沈降速度の目視を指標にしてBA11株を選択した。沖縄産廃糖蜜サトウキビから3回砂糖を回収した廃糖蜜を水で希釈して糖分を約15ww含有するように調整した培養液中でBA6株およびBA11株を40°Cで培養したところ、エタノール発酵性および凝集沈降性においてBA11株がBA6株より優れていることを確認した。サッカロミセスセレビシエBA11株は受託番号NITEBP-793として独立行政法人製品評価技術基盤機構特許微生物寄託センター〒292-0818日本国千葉県木更津市かずさ鎌足2-5-8に国際寄託済みである受託日:2009年8月11日。実施例2:サッカロミセスセレビシエBA16株の作製バイオアカデミア株式会社保存株のうち凝集沈降性とアルコール耐性において優れたサッカロミセスセレビシエBA5株と上記BA11株を細胞融合し、BA11株の特徴を維持しつつ凝集沈降性およびエタノール発酵能が向上した酵母株の作出を試みた。細胞融合は両菌株に別々の遺伝的マーカーをつけて、ポリエチレングリコールによって融合させ、遺伝的マーカーを相補する融合株を選択する公知の方法大嶋泰治編、酵母の分子遺伝学実験法、学会出版センター、1996年に従って行った。融合株を1.2MKClを含むYPD培地で42°Cにて培養し、続いて同じ組成のYPD平板培地でコロニーを形成させ、生育の良いコロニーを選択した。選択したコロニーを、沖縄産廃糖蜜サトウキビから3回砂糖を回収した廃糖蜜を水で希釈して糖分を約15ww含有するように調整した培養液を用いて40°Cで培養し、最もエタノール発酵性に優れたBA16株を選択した。BA16株は、BA11株の特徴を維持するとともに、高温でのエタノール生産能力と凝集沈降性においてBA11株より優れていることを確認した。サッカロミセスセレビシエBA16株は受託番号NITEBP-794として独立行政法人製品評価技術基盤機構特許微生物寄託センター〒292-0818日本国千葉県木更津市かずさ鎌足2-5-8に国際寄託済みである受託日:2009年8月11日。実施例3:耐塩性の検討KClを含まないYPD寒天培地および2.0MのKClを含むYPD寒天培地に、BA11株、BA16株、BA6株およびS288C株出芽酵母遺伝学研究用の標準株の4種類の酵母をそれぞれ接種し、35°Cで24時間培養した。2.0MのKClを含むYPD寒天培地の結果を図1に、KClを含まないYPD寒天培地の結果を図2に示した。図1および図2から明らかなように、KClを含まないYPD寒天培地ではすべての菌株が生育できたが、2.0MのKClを含むYPD寒天培地では、BA6株およびS288C株は生育できなった。この結果は、BA11株およびBA16株が非常に優れた耐塩性を有していることを示すものである。実施例4:BA11株の40°Cにおける発酵性能の検討沖縄産廃糖蜜サトウキビから3回砂糖を回収した廃糖蜜を水で約3倍に希釈して糖分15ww、灰分5~6wwを含有するように調整し、この廃糖蜜希釈液を原料として、BA11株の発酵性能を検討した培養方法の詳細は実施例6を参照。結果を表1に示した。表1から明らかなように、BA11株は、糖分15ww、灰分5~6wwを含有する廃糖蜜希釈液を原料として、培養温度40°Cで7v/vを超えるエタノールを生産した。この結果は、BA11株が耐熱性および高温におけるエタノール生産性に優れていることを示すものである。実施例5:凝集沈降性の検討1BA11株を、グルコース5含有YPD培地100mLを入れた200mLの三角フラスコ中で、恒温振とう培養機を用いて35°C、回転数150rpmの条件下で12時間攪拌培養した。攪拌を停止して100mLビーカーに移し1分後の状態を図3に示した。図3から明らかなように、BA11株は攪拌停止から1分以内に凝集沈降して液層の濁りがなくなった。実施例6:凝集沈降性の検討2BA11株、BA16株およびS288C株出芽酵母遺伝学研究用の標準株を、グルコース5含有YPD培地を入れた三角フラスコ中で、恒温振とう培養機を用いて35°C、回転数150rpmの条件下で12時間攪拌培養した。各酵母の培養液を十分混和して同時にメスシリンダーに移して静置した。静置直後スタートおよび1分経過後に写真を撮影し、沈降性を比較した。結果を図4に示した。図4から明らかなように、S288C株は全く沈降性が認められなかった。1分間の静置により、BA11株およびBA16株とも液層の濁りが目視で認められなくなり、液層と菌体層に分離した。BA16株の方がBA11株より優れた沈降性を示した。実施例7:BA11株と従来株Aの発酵性能の比較沖縄産廃糖蜜サトウキビから3回砂糖を回収した廃糖蜜を水で約3倍に希釈して糖分約15ww、灰分5~6wwを含有するように調整した廃糖蜜希釈液を原料とした。従来株Aは33°Cで培養し、BA11株は38°Cで培養してエタノール生産性と糖の減少を測定した。具体的には、BA11株は以下の方法で培養を行った。1前培養;-80°Cの冷凍庫に15グリセロール中で保存されていたBA11株を、500mlバッフル付三角フラスコに100mlの5グルコースを含むYPD培地に2白金耳分を植菌し38°C、170rpmで24時間振とう培養した。5Lジャーファーメンターに5グルコース含有YPD培地3Lを入れ、その中に培養液全量を投入し38°C、200rpm撹拌、0.5VVM通気の条件下で24時間培養した。2本培養;100L酒母槽に水で糖分が約10になるように希釈した廃糖蜜最終濃度0.8硫安添加60Lを入れその中に前培養液3Lを投入し、38°C、20Hz撹拌、0.5VVM通気の条件下で24時間培養した。1000L培養槽に同組成の希釈廃糖蜜600Lを入れ、その中にこの培養菌体液30Lを投入し、38°C、20Hz撹拌、0.5VVM通気の条件下で24時間培養した。3発酵;10000L発酵槽に、糖分約15ww、灰分5~6wwになるように希釈した廃糖蜜最終濃度0.8硫安添加4275Lを入れ、その中に214Lの上記培養菌体液を投入し、38°C、緩速撹拌150rpm、通気循環量15m3hr条件下で17時間培養した。発酵終了後撹拌および通気を停止し約2時間清置することによって、菌体を凝集沈降させて固液を分離し、上清のもろみを抜き出した。4繰り返し回分発酵回分培養;発酵槽中の沈降菌体液720Lに廃糖蜜希釈液糖分約15ww、灰分5~6ww、最終濃度0.8硫安添加4500Lを加え、3と同様の条件下で発酵させた。この操作を繰り返した。結果を図5に示した。BA11株、従来株A図中、従来酵母とも、糖を約50エタノールに変換し、ほぼ理論値の限界のエタノール生成収率を得た。しかし、データを示していないが、従来株Aは34°Cでは生成収率が減少し38°Cでは全くエタノールを生産できないので、温度耐性耐熱性においてBA11株は従来株Aを大きく凌いでいた。本実施例ではBA11株を用いて38°Cで8回の繰り返し回分培養が可能であることが確認できた。この結果はBA11株がエタノール耐性に顕著に優れていることを示している。なお、比較に用いた従来株Aでは33°Cにおいて4回の繰り返し回分培養を確認できた。実施例8:BA11株の40°Cにおける繰り返し発酵性能沖縄産廃糖蜜サトウキビから3回砂糖を回収した廃糖蜜を水で約3倍に希釈して糖分約15ww、灰分5~6wwを含有するように調整した廃糖蜜希釈液を原料として、BA11株の40°Cにおける繰り返し発酵性能を検討した培養方法の詳細は実施例6を参照。結果を図6に示した。この結果から、BA11株を用いて40°Cで4回の繰り返し回分培養が可能であることが確認できた。なお、各バッチの生産性は1バッチ目が2.33g/hL、2バッチ目が2.35g/hL、3バッチ目が2.11g/hL、4バッチ目が1.67g/hLであった。実施例9:BA11株およびBA16株の発酵性能沖縄産廃糖蜜サトウキビから3回砂糖を回収した廃糖蜜を水で約3倍に希釈して糖分約15ww、灰分5~6wwを含有するように調整した廃糖蜜希釈液を原料として、BA11株およびBA16株の発酵性能を検討した培養方法の詳細は実施例6を参照。1回目は30°Cで21時間培養し、攪拌を止めて6時間静置して凝集沈降させた。上清を回収して新たに原料を添加し、2回目は38°Cで16時間培養し、攪拌を止めて7時間静置した。結果を図7に示した。BA11株は1コロニー菱形BA16株は3コロニー丸、三角、四角を使用した。図7から明らかなように、BA16株は、BA11株と同等以上の発酵性能を有しており、特に高温38°Cでの発酵性能はBA11株より優れていることが確認できた。実施例10:耐熱性の検討1約3倍希釈した廃糖蜜を含むYPD寒天培地にBA11株を接種し、種々の温度で24時間培養して耐熱性を検討した。対照として清酒酵母K7株日本醸造協会を使用した。結果を図8に示した。図8から明らかなように、BA11株は43°Cでも生育可能であった。実施例11:耐熱性の検討2YPD寒天培地にBA11株およびBA16株を接種し、38°Cまたは43°Cで12時間培養して耐熱性を検討した。対照としてS288C株出芽酵母遺伝学研究用の標準株を使用した。結果を図9に示した。図9から明らかのようにBA11株およびBA16株は43°Cでも生育可能であった。実施例12:BA11株およびBA16株の倍数性の解析比較株として、1倍体株SC288CJBiolChem246781778191971、2倍体株K14清酒酵母協会14号、日本醸造協会、4倍体株SC1333別名NCYC1333、英国NationalCollectionofYeastCulture保存株を用い、BA11株およびBA16株の倍数性を解析した。具体的には、YPD培地で30°C、16時間培養した対数増殖期の細胞をOD660が約0.1になるように希釈し、蛍光色素ヨウ化プロビジウムPIで染色した後、フローサイトメトリー法で1細胞あたりのDNA含量と、対応する細胞数を解析した。結果を図10に示した。図10において各チャートの横軸はDNA含量を表し、縦軸は細胞数を表す。図10から明らかなように、BA11株およびBA16株のDNA含量の分布は、比較菌株のK142倍体と同様であった。したがって、BA11株およびBA16株は、いずれも2倍体であることが確認された。実施例13:BA11株およびBA16株のrDNA領域の塩基配列解析核のリボゾームRNAをコードする領域rDNAは、酵母では細胞あたり約150コピーの繰り返し配列を持ち、転写後スプライスで除かれるITS1、ITS2InternalTranscribedSpacer12、図11A参照領域は進化の速度が速いため、同種の中での固有の菌株で異なる場合が多い。そのためITS領域の塩基配列は菌株の識別に用いることが可能であるAmplificationanddirectsequencingoffungalribosomalRNAgenesforphylogeneticsinPCRProtocolsAGuidetoMethodsandApplicationsAcademicPress1990。rDNAのITS1およびITS2領域の塩基配列の決定法、これらの領域の塩基配列の決定およびクローニングに用いたプライマーの配列はKawahataらの文献KawahataMetalBiosciBiotechnolBiochem71161616202007に従った。出芽酵母遺伝学研究用の標準株であるS288C株1倍体を対照とした。BA11株、BA16株およびS288C株からそれぞれDNAを抽出し、PCR法でITS1およびITS2領域のDNAを増幅した。得られたDNA断片をプラズミドにクローニングして塩基配列を解析した。結果を図11Bに示した。ITS1の領域Aにおいて、対照株S288C株は28番目からTが7個続くが、BA11株およびBA16株ではTが7個続く配列とTが9個続く配列の2種類の配列が同定された。ITS1の領域Bでは、BA11株において242番目のTがCに置換された配列が10クローン中1クローンだけに見出されたが、PCRにより生じたエラーの可能性がある。ITS1の領域Cの301番目が対照株ではCであるのに対しBA11株およびBA16株ではTであった。ITS2の領域Dでは対照株とBA16株ではTが8個続く配列を有したが、BA11株ではTが8個続く配列と9個続く配列の2種類の配列が同定された。領域Eにおいて、対照株は163番目からTが7個続く配列を有したが、BA11株およびBA16株ではTが6個続く配列であった。BA11株およびBA16株がヘテロな配列の領域を持つことは両株が細胞融合法で作成されたヘテロ2倍体であることと合致している。BA11株およびBA16株がITS領域において少なくとも4箇所の配列が対照株と異なること、並びに上記Kawahataらの文献で解析されたSaccharomycescerevisiae29株のいずれとも異なるユニークな配列を有していることが判明したので、ITS領域の塩基配列はBA11株およびBA16株の識別に極めて有効であると考えられる。なお本発明は上述した各実施形態および実施例に限定されるものではなく、請求項に示した範囲で種々の変更が可能であり、異なる実施形態にそれぞれ開示された技術的手段を適宜組み合わせて得られる実施形態についても本発明の技術的範囲に含まれる。また、本明細書中に記載された学術文献および特許文献の全てが、本明細書中において参考として援用される。