"一般式1Xはアリーレン基を表し、YはOH、又はNH2を表し、R1~R3のうち少なくとも一つはSO3H、SO3Na、又はSO3Kを表し、nは、2~104の整数である。で表されるポリアミド誘導体を含むウイルス捕捉高分子。アリーレン基がフェニレン基、又はナフチレン基である請求項1に記載のウイルス捕捉高分子。請求項1又は2に記載のウイルス捕捉高分子の製造方法において、一般式2YはOH、又はNH2を表す。で表される重合性化合物I、及び一般式3Xはアリーレン基を表し、R1~R3のうち少なくとも一つはSO3H、SO3Na、又はSO3Kを表す。で表される重合性化合物IIとのラジカル重合反応により製造することを特徴とするウイルス捕捉高分子の製造方法。請求項3に記載のウイルス捕捉高分子の製造方法において、一般式3で表される重合性化合物IIのモル数/一般式2で表される重合性化合物Iのモル数の比率が、1以上である請求項3に記載のウイルス捕捉高分子の製造方法。ウイルスが、B型肝炎ウイルス、C型肝炎ウイルス、又はヒト免疫不全ウイルスである請求項1~3に記載のウイルス捕捉高分子。ウイルスが、B型肝炎ウイルス、C型肝炎ウイルス、又はヒト免疫不全ウイルスである請求項4に記載のウイルス捕捉高分子の製造方法。請求項1に記載のウイルス捕捉高分子を用いたウイルスを捕捉する方法。上記のように、これまでの技術では、天然からの糖類を用いた場合には、その組成が一定でないため必ずしも安定したウイルス捕捉機能を有する高分子化合物を調整できるわけではなく、また、ウイルス捕捉能を有する天然の糖類を用いていない高分子化合物においても、必ずしも十分なウイルス捕捉能を発現しているものとはいえない。そこで、本発明の課題は、天然の糖類を用いていない高分子化合物においても、十分なウイルス捕捉能を発現する高分子化合物を提供することにある。上記課題を解決するために、本発明者らはグルコサミン骨格を有する糖類が固定化された高分子化合物の検討、及び最適化を行うことにより本発明を完成させるに至った。即ち、本発明は、グルコサミン骨格を有する糖類が固定化されたウイルス捕捉作用を有する高分子化合物に関する。本発明によれば、ウイルスを含む液からウイルスを捕捉することができ、ウイルスを含む液中のウイルスを減じることができる。即ち、本発明は、1.一般式1Xはアリーレン基を表し、YはOH、又はNH2を表し、R1~R3のうち少なくとも一つはSO3H、SO3Na、又はSO3Kを表し、nは、2~104の整数である。で表されるポリアミド誘導体を含むウイルス捕捉高分子、2.アリーレン基がフェニレン基、又はナフチレン基である1.に記載のウイルス捕捉高分子、3.1.又は2.に記載のウイルス捕捉高分子の製造方法において、一般式2YはOH、又はNH2を表す。で表される重合性化合物I、及び一般式3Xはアリーレン基を表し、R1~R3のうち少なくとも一つはSO3H、SO3Na、又はSO3Kを表す。で表される重合性化合物IIとのラジカル重合反応により製造することを特徴とするウイルス捕捉高分子の製造方法、4.3.に記載のウイルス捕捉高分子の製造方法において、一般式3で表される重合性化合物IIのモル数/一般式2で表される重合性化合物Iのモル数の比率が、1以上である請求項3に記載のウイルス捕捉高分子の製造方法、5.ウイルスが、B型肝炎ウイルス、C型肝炎ウイルス、又はヒト免疫不全ウイルスである1.~3.に記載のウイルス捕捉高分子、6.ウイルスが、B型肝炎ウイルス、C型肝炎ウイルス、又はヒト免疫不全ウイルスである4.に記載のウイルス捕捉高分子の製造方法、7.1.に記載のウイルス捕捉高分子を用いたウイルスを捕捉する方法、に関する。以下、本発明を詳細に説明する。本発明に用いられる糖類に制限はないが、合成が容易であること、硫酸化誘導体には好ましいウイルス捕捉能を有することから、糖類の水酸基がスルホン酸化されることにより、スルホ基、或いはスルホニウム塩基を有するグルコサミン誘導体が好適である。スルホン化は、通常公知のスルホン化条件化に行うことができる。本発明の中空糸のスルホン酸化は、濃硫酸又は発煙硫酸等のスルホン酸化剤を用いた通常公知の方法で行うことが可能である。また、Me3NSO3等の公知慣用のスルホン酸化剤も用いることができる。得られたスルホン酸基は、公知慣用の方法により、スルホン酸塩とすることができる。このような塩としては、ウイルスを捕捉することができるものであれば特に制限はないが、スルホン酸のナトリウム塩、カリウム塩、カルシウム塩、マグネシウム塩等の金属イオンと形成される塩、トリアルキルアミン類、芳香族アミン類と形成される塩等を好ましい塩として挙げることができる。また、本発明に使用されるグルコサミン誘導体では、グリコシド結合により結合されたアリーレン基を有する化合物を使用することに特徴を有する。このような、アレーレン基の種類に制限はないが、フェニレン基、ナフチレン基が好ましい。また、高分子化合物として、ポリアミドが好ましいことから、アレーレン基の置換基として、アミノ基を有することが好ましい。アレーレン基の導入は、公知慣用の方法で行うことができ、例えば、1位がハロゲン化されたグルコサミン誘導体に、4-ニトロベンゼンを反応させ、更にニトロ基を還元することにより得ることができる。更に、得られたアミノ基を有する糖類誘導体に塩化アクリロイルを反応させることにより、アクリルアミド基を有する糖類誘導体とすることができる。上記アクリルアミド基を有する糖類誘導体の合成スキームの概略は以下のように表すことができる。但し、使用する試薬は、本反応に用いられる一例でありこれらに限られるものではない。本発明のウイルス補足用高分子化合物は、上記で得られたアクリルアミド基を有する糖類誘導体と、アクリル酸或いはアクリルアミドを重合反応させることにより得ることができる。本重合反応は、ラジカル重合反応が好ましく、本ラジカル反応は、アクリル酸或いはアクリルアミド等のアクリル系モノマーを重合できる公知慣用の方法で行うことができる。本発明の高分子を得るためには、ラジカル重合開始剤を用いることができる。本発明で用いるラジカル重合開始剤は、光重合開始剤、及び熱重合開始剤が挙げられる。光重合開始剤としては、具体的には、ベンゾイン、ベンゾインメチルエーテル、ベンゾインエチルエーテル、ベンゾインブチルエーテル、2-メチルベンゾイン、ベンゾフェノン、ミヒラーズケトン、ベンジルジメチルケタール、2,2-ジエトキシアセトフェノン、ベンゾイル安息香酸、4-ベンゾイル-4’-メチルジフェニルサルファイド、3,3’-ジメチル-4-メトキシベンゾフェノン、1-4-ドデシルフェニル-2-ヒドロキシ-2-メチルプロパン-1-オン、1-ヒドロキシシクロヘキシルフェニルケトン、2-ヒドロキシ-2-メチル-1-フェニルプロパン-1-オン、2-メチル-1-4-メチルチオフェニル-2-モルホリノプロパン-1、2-クロロチオキサントン、2,4-ジエチルチオキサントン、2,4-ジイソプロピルチオキサントン、2,4,6-トリメチルベンゾイルジフェニルホスフィンオキサイド等が挙げられる。また、これらの光重合開始剤には、アミン類等の光重合促進剤を併用することができる。例えば、2-ジメチルアミノエチルベンゾエート、ジメチルアミノアセトフェノン、p-ジメチルアミノ安息香酸エチル、p-ジメチルアミノ安息香酸イソアミル等が挙げられる。これらの光重合促進剤の使用割合は、光重合開始剤100重量部に対して、0.1~100重量部の範囲であることが、重合速度が速く、かつ、硬化物の屈折率が高くなる点から好ましい。その他、重合開始剤としては、公知の過酸化物系開始剤やアゾビス系開始剤を使用することができる。過酸化物系開始剤としては、具体的には、メチルエチルケトンパーオキサイド、メチルイソブチルケトンパーオキサイド、シクロヘキサノンパーオキサイド、メチルシクロヘキサンケトンパーオキサイド、アセチルアセトンパーオキサイド等のケトンパーオキサイド系開始剤、イソブチルパーオキサイド、m-クロロベンゾイルパーオキサイド、2,4-ジクロロベンゾイルパーオキサイド、α-メチルベンゾイルパーオキサイド、ビス-3,5,5-トリメチルヘキサノイルパーオキサイド等のジアシルパーオキサイド系開始剤、2,4,4-トリメチルペンチル-2-ハイドロパーオキサイド、ジイソプロピルベンゼンハイドロパーオキサイド、クメンハイドロパーオキサイド、t-ブチルハイドロパーオキサイド等のハイドロパーオキサイド系開始剤、ジクミルパーオキサイド、2,5-ジメチル-2,5-ジt-ブチルパーオキシヘキサン、1,3-ビスt-ブチルパーオキシイソプロピルベンゼン、t-ブチルクミルパーオキサイド等のジアルキルパーオキサイド系開始剤、1,1-ジ-t-ブチルパーオキシ-3,3,5-トリメチルシクロヘキサン、2,2-ジ-t-ブチルパーオキシブタン、4,4-ジ-t-ブチルパーオキシ吉草酸-n-ブチルエステル等のパーオキシケタール系開始剤、2,4,4-トリメチルペンチルパーオキシフェノキシアセテート、α-クミルパーオキシネオデカノエート、t-ブチルパーオキシベンゾエート、ジ-t-ブチルパーオキシトリメチルオジペート等のアルキルパーエステル系開始剤、ジ-t-メチキシブチルパーオキシジカーボネート、ジ-2-エチルヘキシルパーオキシジカーボネート、ビス4-t-ブチルシクロヘキシルパーオキシジカーボネート、ジイソプロピルパーオキシジカーボネート等のパーカーボネート系開始剤、その他のアセチルシクロヘキシルスルフォニルパーオキシジカーボネート、t-ブチルパーオキシアリルカーボネート等のものが挙げられ、また、アゾビス系開始剤としては、具体的には、1,1’-アゾビスシクロヘキサン-1-カルボニトリル、2,2’-アゾビス2-アミジノプロパンジハイドロクロライドAAPD、2,2’-アゾビス-2,4-ジメチルバレロニトリル、2,2’-アゾビス-4-メトキシ-2,4-ジメチルバレロニトリル、2,2’-アゾビス-メチルイソブチレート、α,α’-アゾビス-イソブチロニトリル、4,4’-アゾビス-4-シアノバレイン酸等が挙げられる。これらの熱重合開始剤は、それぞれ単独で用いることができ、また、2種以上の混合物として使用することもできる。反応時間は、1~24時間範囲で十分であるが、開始剤の種類、反応温度によりその反応時間を設定することが望ましい。更に、反応時間の設定は、得られる重合体の分子量制御に合わせて、設定することが望ましい。下式に、高分子化合物の反応式を示すが、記載された反応温度、重合触媒は、これらに限らない。本発明のウイルス捕捉高分子は、各種ウイルスを捕捉する能力があることから、広く各種ウイルスを含む液からウイルスを捕捉する用途に用いることができ、例えば、医薬、医療用器具、環境水中に含まれるウイルス量の測定等に用いることができる。ここで、ウイルスを含む液としては、例えば、ウイルスを含み得る環境水、ヒトの体内液体成分である体液、ウイルスを含んだ培養液、生活用水等を挙げることができる。体液のより具体的な例としては、血液、唾液、汗、尿、鼻水、精液、血漿、リンパ液、組織液等を挙げることができる。環境水の具体的な例としては、河川水、湖沼水、地下水、海水等が挙げられる。生活用水としては、水道水、井戸水、温泉、プール水等が挙げられる。本発明で対象とするウイルスは、本発明の高分子化合物で捕捉が可能なウイルスであれば、特に制限はないが、例えばA型肝炎ウイルス、B型肝炎ウイルス、C型肝炎ウイルス、E型肝炎ウイルス、アデノウイルス、エンテロウイルス、ノロウイルス、インフルエンザウイルス、ヒト免疫不全ウイルス、ロタウイルス、又はポリオウイルス等を挙げることができる。以下、実施例により本発明を更に詳細に説明する。合成例1:p-N-acrylamidophenyl2-acetamido-2-deoxy-6-sulfo-β-D-glucopyranoside9の合成<p-Nitrophenyl2-acetamido-2-deoxy-6-sulfo-β-D-glucopyranoside5の合成>p-Nitrophenyl2-acetamido-2-deoxy-β-D-glucopyranoside7500mgをDMF5mLに懸濁させ、40°Cの油浴上でMe3NSO3のDMF5mL溶液を加え、そのままの温度で磁気攪拌した。反応開始から反応の進行を逆相TLCH2O:MeOH=4:1でモニタリングし、副生成物のスポットが見られたところでMeOHを加えて反応を終了させた。エバポレーター、油圧ポンプで溶媒を留去し、逆相クロマトグラフィーH2O:MeOH=4:1で精製した。生成物をイオン交換樹脂Naformで24時間イオン交換を行い、ろ紙で樹脂を取り除いた。ろ液を凍結乾燥させ、やや黄色がたった白色粉末8を得た。収量:442mg収率:68<9の合成>上記8150mgをMeOH:5mLとH2O5mLに溶解させ、Pd/C9mgを加え、水素雰囲気下で4時間磁気攪拌した。反応の終了を逆相TLCH2O:MeOH=10:1で確認し、Pd/Cを吸引ろ過で除去した。ろ液を減圧濃縮し、真空乾燥してアミン体の粗生成物を得た。これをH2O6mLとTHF3mLに溶解させ、0°CでK2CO3140mgと塩化アクリロイル41μLを加えた。室温へ昇温し、反応の進行を逆相TLCH2O:MeOH=10:1でモニタリングし、反応終了を確認した後にアンバーリストで反応液を中和した。ひだ折りろ紙で樹脂を取り除き、ろ液を留去した。残渣を逆相クロマトグラフィーH2Oで精製し、溶出液を凍結乾燥させ、白色固体9を得た。収量:127mg収率:80。合成例2:p-N-acrylamidophenyl2-acetamido-2-deoxy-3-sulfo-β-D-glucopyranoside13の合成<p-Nitrophenyl2-acetamido-4,6-O-benzylidene-2-deoxy-β-D-glucopyranoside10の合成>上記41gをDMF30mLに溶解させ、ベンズアルデヒドジメチルアセタール530μL、p-トルエンスルホン酸1水和物80mgを加え、ロータリーエバポレーターにて減圧下、50°Cで12時間反応を行った。順相及び逆相TLCCHCl3:MeOH=10:1、H2O:MeOH=2:1にて反応終了を確認した後、飽和重曹水を加え、室温で30分間磁気攪拌した。析出した固体を桐山ロートでろ取し、H2OとEt2Oで結晶を洗い、真空乾燥して10を得た。収量:801mg収率:64<p-Nitrophenyl2-acetamido-4,6-O-benzylidene-3-sulfo-2-deoxy-β-D-glucopyranoside11の合成>上記10100mgを乾燥DMF3mLに懸濁させ、40°Cに加温した。SO3-NMe3323mgを加え、そのままの温度で3日間磁気攪拌した。順相TLCCHCl3:MeOH=4:1で反応の進行をモニタリングし、ほぼ反応が進行したところでMeOHを加え反応を終了した。溶媒を留去し、残渣を順相フラッシュクロマトグラフィーCHCl3:MeOH=4:1で精製して11を得た。収量:52mg収率:391H-NMR400MHz,D2O8.27-8.242H,m,7.58-7.562H,m,7.48-7.463H,m,7.24-7.222H,m,5.781H,s,Ph-H,5.571H,d,J1,28.4Hz,H-1,4.49-4.391H,m,4.34-4.261H,m,4.03-3.914H,m,3.749H,s,2.003H,s,-NHAc<p-N-acrylamidophenyl2-acetamido-2-deoxy-3-sulfo-β-D-glucopyranoside13の合成>上記11894mgを95MeOH水に溶解させ、40°Cに加温した。10Pd/C90mgと濃塩酸681μLを加え、N2置換後、H2加圧下で24時間磁気攪拌した。24時間後、逆相TLCH2O:MeOH=4:1で反応の終了を確認し、グラスファイバーろ紙でPd/Cを取り除いた。ろ液を留去し、残渣をTHF/H2O1:2、15mLにて溶解させ、0°Cに冷却した。塩化アクリロイル190μLとK2CO3651mgを加え、5分間、0°Cで攪拌した後、室温へ昇温した。12時間攪拌した後に逆相TLCH2O:MeOH=4:1で反応の終了を確認し、1規定塩酸で中和した。逆相カラムH2O:MeOH=6:1で精製して12とした後、目的物の入ったフラクションをイオン交換樹脂Naformでイオン交換した。溶媒を減圧留去し、残渣をH2Oに溶解させ、凍結乾燥して13を得た。収量:182mg収率:25。合成例3:p-N-acrylamidophenyl2-acetamido-2-deoxy-4-sulfo-β-D-glucopyranoside19の合成<p-Nitrophenyl2-acetamido-3-O-benzoyl-4,6-O-benzylidene-2-deoxy-β-D-glucopyranoside14の合成>上記10800mgのCH2Cl2:ピリジン=1:1.5溶液15mLに0°Cで、N,N-ジメチル-4-アミノピリジンDMAP45mgと塩化ベンゾイル324μLをゆっくり滴下し、0°Cで磁気攪拌した。反応の終了を順相TLCCHCl3:MeOH=10:1で確認し、MeOHを加えて反応を止め、溶媒を留去した。残渣をCHCl3/MeOHca.5:1から再結晶し、白色固体を得た。析出した結晶を桐山ロートでろ取し、真空乾燥した第1晶。ろ液を減圧濃縮し、同様に結晶を析出させ、結晶をろ取して14を得た。収量:483mg収率:491H-NMR400MHz,dimethylsulfoxide-d68.25-8.203H,m,7.96-7.942H,m,7.69-7.641H,m,7.55-7.522H,m,7.35-7.297H,m,5.701H,s,-PhH,5.661H,d,J1,28.4Hz,H-1,5.531H,t,J2,3=J3,49.8Hz,H-3,4.331H,dd,J3,49.8Hz,J4,54.2Hz,H-4,4.331H,dd,J2,39.8Hz,J1,28.4Hz,H-2,4.071H,t,J5,6a=J6a,6b9.7Hz,H-6a,4.001H,td,J5,6a=J6a,6b9.7Hz,J4,54.2Hz,H-5,3.851H,t,J5,6b=J6a,6b9.7Hz,H-6b,1.683H,s,-NHAc.13C-NMR100MHz,dimethylsulfoxide-d6169.5,165.3,161.5,142.3,137.2,133.5,129.3,129.2,128.9,128.8,128.1,126.0,125.8,116.7,169.5,165.3,161.5,100.4,97.8,77.9,72.3,67.5,66.0,53.4,22.6.ESI-MSm/zcalcdforC28H27N2O9,535.17;found535.07,[M-H],calcdforC28H26N2NaO9,557.15;found534.16,[M-Na],calcdforC56H52N4NaO18,1091.31;found1091.07,[2M-Na]<p-Nitrophenyl2-acetamido-3-O-benzoyl-6-O-benzyl-2-deoxy-4-hydroxy-β-D-glucopyranoside15の合成>上記14297mgのCH2Cl24mL懸濁液に0°Cでトリフロロ酢酸232μLとEt3SiH444μLを加え、15分間低温反応装置で磁気攪拌した。そのままの温度でトリフロロ酢酸207μLを滴下し、10分間磁気攪拌し、室温へ昇温した。終夜攪拌後、順相TLCEtOAc:Hexane=1:1で反応の終了を確認し、反応液をEtOAcで希釈した。NaHCO3、H2O、brineで洗浄し、MgSO4で乾燥させ、ひだ折りろ紙でMgSO4を取り除き、ろ液を減圧濃縮した。残渣をシリカゲルクロマトグラフィーEtOAc:Hexane=1:1で精製し、白色固体15を得た。収量:260mg収率:871H-NMR400MHz,CDCl38.07-8.032H,m,7.97-7.952H,m,7.55-7.511H,m,7.40-7.362H,m,7.27-7.195H,m,7.06-7.022H,m,6.101H,d,J-NH,28.8Hz,-NH,6.101H,d,J1,28.4Hz,H-1,4.331H,dt,J2,310.4Hz,J1,2=J-NH,28.8Hz,H-2,3.94-3.852H,m,H-4,H-5,3.801H,dd,J6a,6b10.4Hz,J5,6a3.2Hz,H-6a,3.721H,dd,J6a,6b10.4Hz,J5,6a5.2Hz,H-6b,3.181H,d,J-OH,43.18Hz,-NH,1.773H,s,-NHAc.13C-NMR100MHz,CDCl3170.7,167.5,161.8,142.8,137.5,133.9,129.9,128.9,128.6,128.5,128.0,127.7,125.7,116.6,98.2C-1,75.6C-3,75.0C-4,73.7Ph-CH2-,70.4C-5,69.8C-6,54.2C-2,23.3-NHCOCH3.ESI-MSm/zcalcdforC28H28N2NaO9,559.17;found559.20,[M-Na],calcdforC56H56N4NaO18,1095.35;found1095.07,[2M-Na]<p-Nitrophenyl2-acetamido-3-O-benzoyl-6-O-benzyl-2-deoxy-4-sulfo-β-D-glucopyranoside16の合成>上記1550mgのDMF5mLに懸濁させ、50°Cに加温した。Me3NSO310eqのDMF5mL溶液をゆっくり滴下し、そのままの温度で3日間磁気攪拌した。逆相TLCH2O:MeOH=3:1で反応の進行をモニタリングし、反応が進行したところでMeOHを加え反応を終了した。エバポレーター、油圧ポンプで溶媒を留去し、逆相クロマトグラフィーH2O:MeOH=1:1で精製した。生成物をイオン交換樹脂Naformで3日間イオン交換を行い、ひだ折りろ紙で樹脂を取り除いた。ろ液を凍結乾燥させ、茶色がかった白色固体16を得た。収量:194mg収率:>99<p-N-acrylamidophenyl2-acetamido-2-deoxy-4-sulfo-β-D-glucopyranoside19の合成>上記1653mgをMeOH5mLに溶解させ、NaOMeを加え、pH10とした。室温で12時間反応を行い、順相TLCCHCl3:MeOH=7:3で反応終了を確認し、アンバーリストで中和した。桐山ロートで樹脂を取り除き、ろ液を減圧留去した。残渣にEt2Oを加え、析出した結晶を桐山ロートでろ取した。さらに、同様に粗結晶をEt2Oで再結晶し、やや茶色の白色粉末を得た。H2O:MeOH=10:1に溶解し、EtOAcで逆抽出した。得られた水層の溶媒を減圧留去して、17を得た。残渣17をH2O:MeOH=1:1溶液50mLに溶解させた。1規定塩酸0.1mLとPd/C90mgを加え、耐圧容器に入れ、N2置換の後、H2置換した。25時間後、反応の終了をTLCH2O:CH3COOH=95:5で確認し、反応液をグラスファイバーろ紙でろ過した。溶媒を留去し、残渣をTHF/H2O1:2、10mLに溶解させ、0°Cに冷却した。塩化アクリロイル176μLとK2CO3601mgを加え、5分間、0°Cで攪拌した後、室温へ昇温した。12時間攪拌した後にTLCH2O:CH3COOH=95:5で反応の終了を確認し、1規定塩酸で中和した。逆相カラムH2O:MeOH=9:1で精製し、溶媒を減圧留去した後、残渣18をH2Oに溶解させ、イオン交換し、凍結乾燥して19を得た。収量:264mg収率:42合成例4:p-N-acrylamidophenyl2-acetamido-2-deoxy-3,4,6-sulfo-β-D-glucopyranoside21の合成<p-Nitrophenyl2-acetamido-2-deoxy-3,4,6-sulfo-β-D-glucopyranoside20の合成>上記4500mgをピリジン15mLを加え、40°Cに加温した。SO3-Py2.32gを加え、40°Cで6日間攪拌した。TLCCHCl3:MeOH=1:1で反応の終了を確認し、MeOH30mLを加えた。イオン交換カラムNaformに反応液を通し、イオン交換を行い、目的物のフラクションを回収し、溶媒を留去した。残渣を逆相クロマトグラフィーH2O:MeOH=9:1で精製して20とした。収量:442mg収率:68<p-N-acrylamidophenyl2-acetamido-2-deoxy-3,4,6-sulfo-β-D-glucopyranoside21の合成>上記20860mgをH2O:MeOH=1:1溶液50mLに溶解させた。Pd/C90mgを加え、N2置換後、H2置換した。25時間後、反応の終了をTLCH2O:CH3COOH=95:5で確認し、反応液をグラスファイバーろ紙でろ過した。溶媒を留去し、残渣をTHF/H2O1:2、10mLに溶解させ、0°Cに冷却した。塩化アクリロイル176μLとK2CO3601mgを加え、5分間、0°Cで攪拌した後、室温へ昇温した。12時間攪拌した後にTLCH2O:CH3COOH=95:5で反応の終了を確認し、1規定塩酸で中和した。逆相カラムH2O:MeOH=9:1で精製し、溶媒を減圧留去した後、残渣をH2Oに溶解させ、凍結乾燥して21を得た。収量:1.07g収率:>99合成例5:Polyacrylamidophenyl-6-sulfo-GlcNAc-co-acrylamide22の合成シュレンク管を吸引しながらヒートガンで熱し、水分を除去した。吸引しながら室温まで下げた。DMFに溶解した合成例1で得られたモノマー9とアクリルアミドをシュレンク管に入れ、N2でバブリングした。AAPDを加え、吸引後、N2充填した。オイルバス60°Cで、下記表に記載の反応時間攪拌した。反応終了後、開封しパスツールピペットで空気を入れ反応を止めた。反応液をアセトンに加え、沈殿物を得た。遠心分離機で沈殿させた後、上澄みをパスツールピペットで取り除いた。残渣をH2Oに溶解し、透析を行った。透析液を凍結乾燥して、目的物を得た。なお、共重合は下表の比率で行い、ポリマー22を得た。合成例6:3S-GlcNAcポリマー:Polyacrylamidophenyl-3-sulfo-GlcNAc-co-acrylamide23の合成合成例5における、合成例1で得られたモノマー9の替わりに合成例2で得られたモノマー13を用いる他は、合成例5と同様にして、ポリマー23を得た。なお、共重合は下表の比率で行った。合成例74S-GlcNAcポリマー:Polyacrylamidophenyl-4-sulfo-GlcNAc-co-acrylamide23の合成合成例5における、合成例1で得られたモノマー9の替わりに合成例3で得られたモノマー19を用いる他は、合成例5と同様にして、ポリマー24を得た。なお、共重合は下表の比率で行った。合成例83,4,6S-GlcNAcポリマー:Polyacrylamidophenyl-3,4,6-sulfo-GlcNAc-co-acrylamide25の合成合成例5における、合成例1で得られたモノマー9の替わりに合成例4で得られたモノマー21を用いる他は、合成例5と同様にして、ポリマー25を得た。なお、共重合は下表の比率で行った。実施例<E2吸着能E2吸着阻害活性>ヘパリン固定化プレートBD社製にヘパリン25μg/mL、100μLをプレートのウエルに分注する。4°Cで一晩放置し、0.1ツイーン20-PBS400μLで3回洗浄する。1BSA-PBS200μLをウエルに分注し、室温で1時間放置する。0.1ツイーン20-PBS400μLで3回洗浄する。次に、適宜希釈した硫酸化糖ポリマー液と5μg/mLHCVE2蛋白質His-tagAbcam製液を等量混合し、室温で1時間放置したものをウエルに100μL分注し、室温で1時間攪拌する。0.1ツイーン20-PBS400μLで3回洗浄する。ペルオキシダーゼ標識化抗His-tag抗体溶液Roche製をウエルに100μL分注し、室温で1時間攪拌する。0.1ツイーン20-PBS400μLで3回洗浄する。TMB基質液PIERCE社をウエルに100μL分注し、室温で10分間攪拌する。0.5mol/L硫酸をウエルに100μL添加して、450nmで吸光度を測定する。硫酸化糖ポリマー液の代わりにPBSとHCVE2蛋白質His-tag溶液を混合したものを同様に測定する。下記の式から硫酸化糖ポリマーがHCVE2蛋白質His-tagの吸着を阻害した割合を算出する。さらに、50阻害した濃度からE2吸着阻害活性を算出するIC50μg/mL。なお、この値は小さいほど硫酸化高分子のE2結合能が高い。作製したポリマーのE2吸着能を測定した結果、3,4,6S-GlcNAcポリマーはE2と強い相互作用を有していた。E2吸着阻害活性=100-硫酸化糖ポリマー液HCVE2蛋白質His-tag液の吸光度/HCVE2蛋白質His-tag液の吸光度×100結果を、表5に示す。"