"ビフィドバクテリウムBifidobacterium属菌由来のβ-フルクトフラノシダーゼを用いて、ラフィノースとケストース類が混在しているラフィノース含有液中のケストース類を選択的に分解し、ラフィノースは残存させること、を特徴とするラフィノースの精製方法。1-ケストース及びネオケストースを選択的に分解すること、を特徴とする請求項1に記載の方法。ビフィドバクテリウムBifidobacterium属菌が、Bifidobacteriumlongumであること、を特徴とする請求項1又は2に記載の方法。Bifidobacteriumlongumが、JCM1217株であること、を特徴とする請求項3に記載の方法。ビフィドバクテリウムBifidobacterium属菌由来のβ-フルクトフラノシダーゼが、配列番号1に記載のアミノ酸配列からなるタンパク質、又は、配列番号1に記載のアミノ酸配列において1若しくは数個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなり且つβ-フルクトフラノシダーゼ活性を有するタンパク質であること、を特徴とする請求項1~4のいずれか1項に記載の方法。ビフィドバクテリウムBifidobacterium属菌由来のβ-フルクトフラノシダーゼが、配列番号2に記載の塩基配列からなる遺伝子がコードするタンパク質、又は、配列番号2に記載の塩基配列からなるDNAと相補的な塩基配列からなるDNAとストリンジェントな条件下でハイブリダイズする遺伝子がコードし且つβ-フルクトフラノシダーゼ活性を有するタンパク質であること、を特徴とする請求項1~5のいずれか1項に記載の方法。ビフィドバクテリウムBifidobacterium属菌が、Bifidobacteriumsp.NT834株FERMP-22055であること、を特徴とする請求項1又は2に記載の方法。ビフィドバクテリウムBifidobacterium属菌由来のβ-フルクトフラノシダーゼが、配列番号3に記載のアミノ酸配列からなるタンパク質、又は、配列番号3に記載のアミノ酸配列において1若しくは数個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなり且つβ-フルクトフラノシダーゼ活性を有するタンパク質であること、を特徴とする請求項1~2、7のいずれか1項に記載の方法。ビフィドバクテリウムBifidobacterium属菌由来のβ-フルクトフラノシダーゼが、配列番号4に記載の塩基配列からなる遺伝子がコードするタンパク質、又は、配列番号4に記載の塩基配列からなるDNAと相補的な塩基配列からなるDNAとストリンジェントな条件下でハイブリダイズする遺伝子がコードし且つβ-フルクトフラノシダーゼ活性を有するタンパク質であること、を特徴とする請求項1~2、7~8のいずれか1項に記載の方法。ラフィノースとケストース類が混在しているラフィノース含有液が、甜菜製糖工程汁であること、を特徴とする請求項1~9のいずれか1項に記載の方法。ビフィドバクテリウムBifidobacterium属菌由来のβ-フルクトフラノシダーゼを用いて処理したラフィノース含有液を、更にクロマト処理すること、を特徴とする請求項1~10のいずれか1項に記載の方法。本発明は、甜菜製糖工程汁などのラフィノースとケストース類いずれも三糖類が混在しているラフィノース含有液から、ケストース類を選択的に除去してラフィノースを精製する方法を提供することを目的とする。上記目的を達成するため、本発明者らは鋭意研究の結果、ビフィドバクテリウムBifidobacterium属菌由来のβ-フルクトフラノシダーゼを用いて酵素処理することで、ラフィノースとケストース類が混在しているラフィノース含有液中のケストース類を選択的に分解し、簡便かつ効率的にラフィノースを精製できることを見出した。すなわち、本発明の実施形態は次のとおりである。1ビフィドバクテリウムBifidobacterium属菌由来のβ-フルクトフラノシダーゼを用いて、ラフィノースとケストース類が混在しているラフィノース含有液中のケストース類を選択的に分解し、ラフィノースは残存させること、を特徴とするラフィノースの精製方法。21-ケストース及びネオケストースを選択的に分解すること、を特徴とする1に記載の方法。3ビフィドバクテリウムBifidobacterium属菌が、Bifidobacteriumlongumであること、を特徴とする1又は2に記載の方法。4Bifidobacteriumlongumが、JCM1217株であること、を特徴とする3に記載の方法。5ビフィドバクテリウムBifidobacterium属菌由来のβ-フルクトフラノシダーゼが、配列番号1に記載のアミノ酸配列からなるタンパク質、又は、配列番号1に記載のアミノ酸配列において1若しくは数個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなり且つβ-フルクトフラノシダーゼ活性を有するタンパク質であること、を特徴とする1~4のいずれか1つに記載の方法。6ビフィドバクテリウムBifidobacterium属菌由来のβ-フルクトフラノシダーゼが、配列番号2に記載の塩基配列からなる遺伝子がコードするタンパク質、又は、配列番号2に記載の塩基配列からなるDNAと相補的な塩基配列からなるDNAとストリンジェントな条件下でハイブリダイズする遺伝子がコードし且つβ-フルクトフラノシダーゼ活性を有するタンパク質であること、を特徴とする1~5のいずれか1つに記載の方法。7ビフィドバクテリウムBifidobacterium属菌が、Bifidobacteriumsp.NT834株FERMP-22055であること、を特徴とする1又は2に記載の方法。8ビフィドバクテリウムBifidobacterium属菌由来のβ-フルクトフラノシダーゼが、配列番号3に記載のアミノ酸配列からなるタンパク質、又は、配列番号3に記載のアミノ酸配列において1若しくは数個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなり且つβ-フルクトフラノシダーゼ活性を有するタンパク質であること、を特徴とする1~2、7のいずれか1つに記載の方法。9ビフィドバクテリウムBifidobacterium属菌由来のβ-フルクトフラノシダーゼが、配列番号4に記載の塩基配列からなる遺伝子がコードするタンパク質、又は、配列番号4に記載の塩基配列からなるDNAと相補的な塩基配列からなるDNAとストリンジェントな条件下でハイブリダイズする遺伝子がコードし且つβ-フルクトフラノシダーゼ活性を有するタンパク質であること、を特徴とする1~2、7~8のいずれか1つに記載の方法。10ラフィノースとケストース類が混在しているラフィノース含有液が、甜菜製糖工程汁であること、を特徴とする1~9のいずれか1つに記載の方法。11ビフィドバクテリウムBifidobacterium属菌由来のβ-フルクトフラノシダーゼを用いて処理したラフィノース含有液を、更にクロマト処理すること、を特徴とする1~10のいずれか1つに記載の方法。本発明によれば、甜菜製糖工程汁などの、いずれも三糖類であるラフィノースとケストース類が混在しているラフィノース含有液から、ケストース類1-ケストース、ネオケストースを選択的に除去し、ラフィノースを簡便かつ効率的に精製することができる。したがって、本発明の精製方法を用いることで、有用な機能性素材である高純度ラフィノースを安価且つ大量に提供することができる。本発明においては、ラフィノース含有液中のケストース類1-ケストース、ネオケストースを選択的に分解し、ラフィノースを分離精製するため、ビフィドバクテリウムBifidobacterium属菌由来のβ-フルクトフラノシダーゼを用いる。ビフィドバクテリウムBifidobacterium属菌由来のβ-フルクトフラノシダーゼは、これに限定されるものではないが、Bifidobacteriumlongum由来のものが好ましい。一例として、BifidobacteriumlongumJCM1217株由来のβ-フルクトフラノシダーゼ配列番号1及び図1にそのアミノ酸配列を示すを挙げることができる。また、他の由来の例としては、ビフィドバクテリウムBifidobacterium属菌であるBifidobacteriumsp.NT834株由来のβ-フルクトフラノシダーゼ配列番号3及び図3にそのアミノ酸配列を示すを挙げることができる。BifidobacteriumlongumJCM1217株については、信用できる保存機関である日本国茨城県つくば市高野台3丁目1番地の1の独立行政法人理化学研究所バイオリソースセンターに保存され、当センターの発行する微生物株カタログにより自由に分譲されうる。また、Bifidobacteriumsp.NT834株については、日本国茨城県つくば市東1丁目1番地1中央第6の独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センターにFERMP-22055として平成23年2011年1月13日に寄託されている。更には、上記菌株由来のβ-フルクトフラノシダーゼのアミノ酸配列において1若しくは数個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなり且つβ-フルクトフラノシダーゼ活性を有するタンパク質、上記菌株由来のβ-フルクトフラノシダーゼをコードする遺伝子と相補的な塩基配列からなるDNAと、例えばこのDNAをプローブとして用いたストリンジェントな条件下でのハイブリダイゼーションによってハイブリダイズする遺伝子がコードし、且つβ-フルクトフラノシダーゼ活性を有するタンパク質なども用いることができる。なお、ここでいうストリンジェントな条件とは、いわゆる特異的なハイブリッドが形成され、非特異的なハイブリッドが形成されない条件をいう。この条件の一例を示せば、70以上の相同性を有するDNAどうしがハイブリダイズし、それより相同性が低いDNAどうしがハイブリダイズしない条件、あるいは通常のハイブリダイゼーションの洗浄条件、例えば1×SSCで0.1SDSに相当する塩濃度で60°Cの温度で洗浄が行われる条件などが挙げられる。上記のようなビフィドバクテリウムBifidobacterium属菌由来のβ-フルクトフラノシダーゼをケストース類を含むラフィノース含有液に作用させれば、三糖類のうちケストース類1-ケストース、ネオケストースのみが選択的に分解され、クロマト処理によってラフィノースと分離されやすい二糖類及び/又は単糖類となる。この場合、当該β-フルクトフラノシダーゼはラフィノースに作用しないため、酵素処理後においてもラフィノースは保存される。なお、当該β-フルクトフラノシダーゼにより、1-ケストースにフルクトースが1分子結合したニストースや2分子結合したフルクトシルニストースもケストース類と同様に分解される。本発明におけるケストース類を含むラフィノース含有液の酵素分解反応において、ケストース類が10~80重量程度含まれていても問題なく処理できる。また、酵素分解反応における糖濃度は0.1~20w/vが好ましい。酵素反応温度は、好ましくは20~55°C、より好ましくは30~50°Cである。反応温度が20°C未満では、反応時間がきわめて長くなる。また60°Cを超えると酵素活性の失活が早くなる。酵素反応時のpHは、好ましくはpH4.5~7.5、より好ましくはpH4.5~6.5である。本発明の方法において、ケストース類を加水分解したラフィノース溶液からラフィノースを分離精製する方法として、陽イオンクロマトグラフィーや陰イオン交換クロマトグラフィー、高速液体クロマトグラフィー、活性炭クロマトグラフィー等のクロマト処理や、結晶化などが挙げられる。クロマト処理はこれらの方法を単独で用いてもよいし、組み合わせてもよい。また、移動床方式や擬似移動床方式、多成分分離循環方式等を利用してもよい。このクロマト処理により、ラフィノースと単糖類及び二糖類場合によっては4つ以上の糖が結合したオリゴ糖とを分離でき、また脱塩脱色も行うことができる。また、ラフィノースの結晶化については、冷却結晶化法例えば特公昭56-39640、特開平11-75900や、蒸発結晶化法例えば特開2009-95281により行うことができる。以下、本発明の実施例について述べるが、本発明はこれらの実施例のみに限定されるものではなく、本発明の技術的思想内においてこれらの様々な変形が可能である。ビフィドバクテリウム属菌由来のβ-フルクトフラノシダーゼの取得ビフィドバクテリウムBifidobacterium属菌由来のβ-フルクトフラノシダーゼの取得は、BifidobacteriumlongumJCM1217株及びBifidobacteriumsp.NT834株を用い、これらから該当する遺伝子を取得し、大腸菌で組換えタンパク質として発現させる方法を用いた。まず、BifidobacteriumlongumJCM1217株及びBifidobacteriumsp.NT834株をそれぞれGAMブイヨン培地中で37°C、12時間静置培養した。その後、遠心分離処理1700×g、10分間を行って菌体を回収し、20mMTris-HClバッファーpH8.0で2回洗浄した。そして、この菌体より、DNeasyTissueKitQiagen社製品を用いて、ゲノムDNAを抽出した。このゲノムDNAを鋳型として、当該酵素の部分アミノ酸配列情報から作製した各種プライマーを用いてdegeneratePCR、TAIL-PCR及びinversePCRを行い、それぞれのβ-フルクトフラノシダーゼ遺伝子をクローニングし定法により塩基配列を決定した。BifidobacteriumlongumJCM1217株のβ-フルクトフラノシダーゼ遺伝子の塩基配列は配列番号2及び図2に、そのコードするタンパク質のアミノ酸配列は配列番号1及び図1に示した。また、Bifidobacteriumsp.NT834株のβ-フルクトフラノシダーゼ遺伝子の塩基配列は配列番号4及び図4に、そのコードするタンパク質のアミノ酸配列は配列番号3及び図3に示した。これらの遺伝子を、大腸菌発現ベクターpET-32bに挿入し、大腸菌EscherichiacoliRosetta2DE3を形質転換した。得られた形質転換体について、組換えタンパク質発現誘導培養を行い、菌体回収、バッファーによる洗浄50mMNaH2PO4,300mMNaCl,pH7.5、超音波破砕、遠心分離処理1700×g、10分間を行って粗酵素液上清を調製した。粗酵素液から、TALONCellThruResinタカラバイオ社製品、登録商標で組換えタンパク質を回収し、更にクロマトグラフィー等によって精製し、β-フルクトフラノシダーゼ活性を有することを確認して精製酵素液とした。なお、BifidobacteriumlongumJCM1217株由来の酵素液を酵素1、Bifidobacteriumsp.NT834株由来の酵素液を酵素2とした。また、当該酵素液のβ-フルクトフラノシダーゼ活性測定については、1-ケストースの末端フルクトースを加水分解する反応を触媒し、フルクトース残基を遊離する活性をβ―フルクトフラノシダーゼ活性とした。β―フルクトフラノシダーゼ活性測定方法は、20mM1-ケストース50μL、0.2Mリン酸ナトリウム緩衝液pH5.725μL、酵素液25μLを混合し、37°Cで10分間反応させた後、100°Cで5分間煮沸して反応を停止させた。反応停止後、反応生成物であるフルクトースを高速液体陰イオン交換クロマトグラフィーHPLC分析条件、Dionex社CarboPacPA-1、室温、150mM水酸化ナトリウム溶液1mL/min、パルスドアンペロメトリー検出器により定量した。酵素活性は、上記条件下で、1分間に1μmolのフルクトースを生成する酵素量を1Uユニットとした。ラフィノース含有液からのラフィノース精製試験I実施例1で取得した酵素1及び酵素2について、以下のラフィノースと1-ケストースが混在しているラフィノース含有液からのラフィノース分離精製試験を行った。a酵素反応1-ケストースが終濃度で50mM2.5w/vと、ラフィノースが終濃度で50mM2.5となるように、10mMリン酸緩衝液pH5.7に溶解した糖液8Lに、各β-フラクトフラノシダーゼ液酵素1又は酵素2、6400Uを混合し、37°Cで1時間酵素反応を行った。反応終了後、沸騰水中で5分間保持することで反応を停止した。反応溶液を高速液体陰イオン交換クロマトグラフィーHPLC分析条件、Dionex社CarboPacPA-1、室温、150mM水酸化ナトリウム溶液1mL/min、パルスドアンペロメトリー検出器で分析した。結果を表1に示す。この結果から、上記酵素を用いて処理することで1-ケストースのみが分解され、ラフィノースは分解されずに保存された。なお、ラフィノースに対する活性を1とした1-ケストースに対する相対活性値の算出式は次の通りである。相対活性値=酵素分解によって分解した1-ケストース量mol/酵素分解によって分解したラフィノース量molbラフィノースの分離方法反応溶液を1000mL糖濃度58w/wにまで減圧濃縮する。反応液を陽イオン交換樹脂ナトリウム型に負荷し、水にて三糖、二糖類、単糖類の順に溶出させ、三糖溶出画分を集めた。なお、反応溶液を1000mL糖濃度77w/vにまで減圧濃縮し、温度約80°Cで擬似移動床法による多成分分離装置に通液して多成分分離三糖画分、二糖類画分、単糖類画分を行うことによっても同様の結果を得ることができた。cラフィノースの結晶化上記bにて得られた三糖画分ラフィノース純度90~98を58w/wまで濃縮した後、液温を40時間で最終20°C迄に、時間の経過とともに大略逆比例的に低下させた。また、攪拌機の攪拌速度は10rpmで行った。得られた白下を、分離機で分離して、ラフィノース結晶と振蜜を得た。ラフィノースの結晶化率は60であった表2。これに対し、酵素反応前のケストース:ラフィノース=1:1混合液についても同様に結晶化を行ったが、ラフィノースの結晶化率は35であった表2。なお、ラフィノースの結晶化率の算出式は次の通りである。ラフィノース結晶化率={結晶純度×白下純度―振蜜純度}×100/{白下純度×結晶純度―振蜜純度}ラフィノース含有液からのラフィノース精製試験II実施例1で取得した酵素1及び酵素2について、以下のラフィノースと1-ケストース、ネオケストースが混在しているラフィノース含有液からのラフィノース分離精製試験を行った。1-ケストースが終濃度で50mM2.5w/vと、ネオケストースが終濃度で50mM2.5w/v、さらにラフィノースが終濃度で50mM2.5となるように、10mMリン酸緩衝液pH5.7に溶解した糖液8Lに、各β-フラクトフラノシダーゼ液酵素1又は酵素2、6400Uを混合し、37°Cで1時間酵素反応を行った。反応終了後、沸騰水中で5分間保持することで反応を停止した。反応溶液を高速液体陰イオン交換クロマトグラフィーHPLC分析条件、Dionex社CarboPacPA-1、室温、150mM水酸化ナトリウム溶液1mL/min、パルスドアンペロメトリー検出器で分析した。結果を表3~5に示す。この結果から、上記酵素を用いて処理することで1-ケストース及びネオケストースが分解され、ラフィノースは分解されずに保存された。なお、ラフィノースに対する活性を1とした1-ケストース、ネオケストースに対する相対活性値の算出式は次の通りである。相対活性値=酵素分解によって分解した1-ケストース又はネオケストース量mol/酵素分解によって分解したラフィノース量molこれらを、実施例2と同様にクロマト処理及びラフィノースの結晶化を行い、ラフィノースの結晶化率は実施例2と同じ60であったのに対し、ケストース類とラフィノースの混合液は35であった表6。なお、ラフィノースの結晶化率の算出については実施例2の方法に準じた。本発明を要約すれば、以下の通りである。本発明は、甜菜製糖工程汁などのラフィノースとケストース類が混在しているラフィノース含有液から、三糖類であるケストース類を選択的に除去して同じ三糖類であるラフィノースを分離精製する方法を提供することを目的とする。そして、ビフィドバクテリウムBifidobacterium属菌由来のβ-フルクトフラノシダーゼを用いて、三糖類であるラフィノースとケストース類が混在しているラフィノース含有液中のケストース類を選択的に分解することで、簡便かつ効率的にラフィノースを精製する。"