ホエイの精密濾過保持液、遠心分離処理液および/または硫安沈殿処理溶液またはその乾燥物であって、ロタウイルス感染防御作用を有する組成物。精密濾過膜の孔径が0004~14μmの範囲にある、請求項1記載の組成物。遠心分離処理の重力が300~30000gの範囲にある、請求項1記載の組成物。硫安沈殿の飽和度が30~100の範囲にある、請求項1記載の組成物。請求項1から4のいずれかに記載の組成物の有効量を含有する、ロタウイルス感染防御作用を有する食品。食品が育児用調製粉乳、高齢者用食品、保健機能食品および病者用食品からなる群より選ばれる請求項5記載の食品。請求項1から4のいずれかに記載の組成物の有効量を含有する、ロタウイルス感染防御作用を有する家畜飼料。請求項5または6の食品を製造するための請求項1から4のいずれかに記載の組成物の使用。請求項7の家畜飼料を製造するための請求項1から4のいずれかに記載の組成物の使用。以下、本発明の効果を実施例に基づき具体的に説明するが、本発明はこれらの具体例に限定されるものではない。[実施例1]ホエイからの抗ロタウィルス感染組成物およびその加熱処理物の調製材料および方法搾乳した未加熱の原乳100kgを72°Cで15秒殺菌し、常法にしたがってモザレラチーズを調製し、生成したホエイのpHを6NNaOHで68とした。遠心分離してクリーム画分と微細なカゼイン粒子を除去した。クリーム画分およびカゼインを除去したホエイを精密濾過装置日本ポール株式会社、MEMBRALOX、孔径01μm、入口圧30kgcm2、温度25°Cで処理後、保持液を採取した。得られた保持液に脱塩水を添加し、再度精密濾過装置に供する操作を3回繰り返した。得られた保持液をスプレードライ法により乾燥した。加熱物の調製は、得られた粉末を蒸留水に10mgmlとなるように溶解後、80°C30分間加熱処理した後、常法により凍結乾燥することにより行った。[実施例2]ウシ常乳由来の組成物のリン脂質含量の測定材料および方法牛乳を用いて前述した実施例1と同一の方法により製造した乳由来組成物のリン脂質含量を測定した。はじめに試料10gに5NaCl溶液50mlを加え溶解後、メタノール100mlを添加した。次に、クロロホルム100mlを加え撹拌後、静置し、クロロホルム層を回収した。同様の操作をさらに2回繰り返した。得られたクロロホルム層を減圧乾固したものをnヘキサン30mlに溶解した。nヘキサン飽和1含水メタノール50mlを加え撹拌後、静置し、メタノール層を回収した。同様の操作をさらに2回繰り返した。得られたメタノール層を減圧乾固したものをクロロホルム:メタノール2:1に溶解し、リン脂質測定用試料を得た。得られた試料中のホスファチジルエタノールアミンPE、ホスファチジルコリンPC、スフィンゴミエリンSM濃度をHPLC法により測定することで、試料中のリン脂質含量を求めた。結果と考察リン脂質の測定結果重量はPE069、PC136、SM085であった。牛乳中のリン脂質の含量は004~005であることが報告されている乳の科学、上野川修一編、朝倉書店、1996。したがって、ホエイのMF膜保持物には牛乳中のリン脂質が高濃度で濃縮されていることが確認された。[実施例3]ウシ常乳由来の組成物、およびその加熱処理物のロタウィルス感染阻害活性の測定材料および方法牛乳を用いて前述した実施例1と同一の方法により製造した乳由来組成物、またはその加熱処理物のロタウィルス感染阻害活性を測定した。ウシ常乳由来の組成物、およびその加熱処理物を試料として、ヒトロタウィルスMO株の感染阻害活性を以下のように測定した。106FCFUmlのヒトロタウィルスMO株04mlと20μgmlのトリプシン04mlを混合し、37°Cで30分間インキュベートした。予め10ウシ胎児血清を含むイーグル培地にて各種濃度に希釈調製された試料50μl試料溶液は045μmのフィルターで濾過滅菌を分注した05mlエッペンドルフチューブに、調製したウィルス溶液をそれぞれ50μlずつ加えて37°Cで1時間培養した。なお、空試験用としては、前記試料50μlに代えて、10ウシ胎児血清を含むイーグル培地50μlを用いた。この培養液が入った各エッペンドルフチューブにそれぞれ2×105mlのアカゲザル腎臓由来MA104細胞を100μl添加し、混合後、各混合液の20μlをそれぞれ対応するスライドグラスに移し、37°Cで45時間培養した。これをアセトンで固定し、ヒトロタウィルス感染細胞数を、一次抗体としてハトロタウィルスPO13株のVP6を特異的に認識するモノクローナル抗体、および二次抗体として蛍光標識したヤギ抗ウサギIgGを用いた間接蛍光抗体法で検出した。なお、感染阻害活性の評価は、下記の式から求められる値阻害率が50以上の時、感染阻害活性ありと判断し、感染阻害活性がある最も低い試料濃度を最小阻害活性とした100×1試料添加時の感染細胞数/空試験の感染細胞数結果と考察ウシ常乳由来の組成物、およびその加熱処理物の最小阻害活性は順に33、および35μgmlウシ血清アルブミンで換算した場合のタンパク質濃度であった。この結果から、該組成物が抗ロタウィルス感染活性を有すること、加熱処理後も抗ロタウィルス活性がほとんど変化しないことが判明した。なお、他の出発原料および方法により製造した本発明の組成物についても、ほぼ同様の結果が得られた。したがって、ウシ乳より精密濾過膜による分離で得られる該組成物には抗ロタウィルス感染活性が存在すること、該組成物の抗ロタウィルス感染活性は耐熱性を有することが明らかとなった。ロタウィルスの感染は標的細胞への接着から始まり、侵入、定着という多段階の過程を含んでいる。今回、該組成物を予めロタウィルスと混合してから標的細胞と反応させたところ、ロタウィルスの感染が阻害されたことから、該組成物の抗ロタウィルス感染活性は標的細胞へのロタウィルスの接着を阻害することにより発揮されていることが示唆された。[実施例4]牛乳を用いて前述した実施例1と同一の方法により製造した乳由来組成物を、05配合した下記処方の乳児用調製粉乳を調製した。[実施例5]ホエイからの抗ロタウィルス感染組成物およびその加熱処理物の調製搾乳した未加熱の原乳100kgを72°Cで15秒殺菌し、常法にしたがってゴーダチーズを調製し、生成したホエイのpHを6NNaOHで68とした。同様にHTST殺菌処理をした原乳100kgから常法にしたがってエメンタールチーズを調製し、生成したホエイのpHを6NNaOHで68とした。これらのホエイを混合後、遠心分離してクリーム画分と微細なカゼイン粒子を除去した。こうして得られたホエイを固形分が17となるように水で希釈してから精密濾過装置Exekia製のセラミックフィルター、孔径01μm、入口圧75kgcm2、温度50°Cで処理後、固形分8の保持液を回収した。得られた保持液はさらに減圧濃縮した後、スプレードライ法により乾燥した。加熱物の調製は、得られた粉末を蒸留水に1、5および10mgmlとなるように溶解後、141°C5秒間加熱処理した後、常法により凍結乾燥することにより行った。なお、10mgmlとなるように溶解したものについては別途100°C5分間および80°C30分間加熱処理したものを調製し、常法により凍結乾燥した。[実施例6]ホエイからの抗ロタウィルス感染組成物およびその加熱処理物のロタウィルス感染阻害活性の測定材料および方法原乳を用いて前述した実施例5と同一の方法により製造した乳由来組成物、またはその加熱処理物のロタウィルス感染阻害活性を実施例3と同一の方法により測定した。すなわち、106FCFUmlのヒトロタウィルスMO株04mlと20μgmlのトリプシン04mlを混合し、37°Cで30分間インキュベートした。予め10ウシ胎児血清を含むイーグル培地にて各種濃度に希釈調製された試料50μl試料溶液は045μmのフィルターで濾過滅菌を分注した05mlエッペンドルフチューブに、調製したウィルス溶液をそれぞれ50μlずつ加えて37°Cで1時間培養した。なお、空試験用としては、前記試料50μlに代えて、10ウシ胎児血清を含むイーグル培地50μlを用いた。この培養液が入った各エッペンドルフチューブにそれぞれ2×105mlのアカゲザル腎臓由来MA104細胞を100μl添加し、混合後各混合液の20μlをそれぞれ対応するスライドグラスに移した。37°Cで45時間培養した後、アセトンで固定し、ヒトロタウィルス感染細胞を間接蛍光抗体法一次抗体としてハトロタウィルスPO13株のVP6を特異的に認識するモノクローナル抗体、二次抗体として蛍光標識したヤギ抗ウサギIgG血清を使用で検出した。活性は実施例3と同様に最小阻害濃度で表した。結果と考察ホエイからの抗ロタウィルス感染組成物に各種食品の製造時の殺菌条件である加熱処理を加えても表3に示すようにその活性はほとんど低下しなかったことから、本活性は最終製品においても維持される可能性が高いと考えられた。[実施例7]ホエイから各種孔径の精密濾過膜を用いて調製した抗ロタウィルス感染組成物搾乳した未加熱の原乳100kgに遠心分離処理8000g、15分間、4°Cを行い、クリームを分離して脱脂乳を得た。この脱脂乳を加温し、05NHClを添加してpH46とした。この状態で15~30分間保持した後、遠心分離処理3000g、15分間、4°Cを行い、カゼインを分離して酸ホエイを得た。この酸ホエイに05NNaOHを添加してpH60とした後、各種孔径01、02、03、045、065、08、10μmの精密濾過膜を用いて酸ホエイの精密濾過処理を実施した。この時の処理条件は入口圧30kgcm2、温度20~25°Cであった。最初に酸ホエイを精密濾過膜で5倍濃縮し、次に濃縮液に加水しながら透析濾過を精密濾過膜の透過液のBrix値が2未満となるまで行った。最後に得られた精密濾過膜の保持液を常法により凍結乾燥し、さらにγ線滅菌処理をして試験試料とした。[実施例8]ホエイから各種孔径の精密濾過膜を用いて調製した抗ロタウィルス感染組成物のロタウィルス感染阻害活性の測定材料および方法原乳を用いて前述した実施例7と同一の方法により製造した抗ロタウィルス感染組成物のロタウィルス感染阻害活性を実施例6と同一の方法により測定した。結果と考察各試料の抗ロタウィルス活性の測定結果を表4に示した。実験試料の最小阻害濃度は、ウシ血清アルブミンで換算した場合のタンパク質濃度で示した。その結果、MF膜の孔径が08μm以上になると、MF保持物の抗ロタウィルス活性の低下が顕著になった。したがって、抗ロタウィルス感染組成物をホエイから調製するためには、用いる精密濾過膜の孔径を065μm以下にすることが望ましいと考えられた。[実施例9]ホエイから遠心分離処理で調製した抗ロタウィルス感染組成物搾乳した未加熱の原乳100kgを63°Cで30分間殺菌し、常法にしたがってカマンベールチーズを調製し、生成したホエイを分離した。このホエイを加温し、遠心分離処理3000g、20分間、40°Cを行い、ホエイクリームを得た。さらにこのホエイクリームを再び50°Cに加温し、遠心分離処理3000g、20分間、50°Cを行った。こうして得られた水相部分以下、wheycreamserumと略を常法により凍結乾燥し、試験試料とした。[実施例10]ホエイから遠心分離処理で調製した抗ロタウィルス感染組成物のロタウィルス感染阻害活性の測定材料および方法原乳を用いて前述した実施例9と同一の方法により製造した抗ロタウィルス感染組成物のロタウィルス感染阻害活性を実施例6と同一の方法により測定した。なお、比較のためにウシラクトフェリンDMV社を対照試料として用いた。結果と考察各試料の抗ロタウィルス活性の測定結果を表5に示した。実験試料の最小阻害濃度は、ウシ血清アルブミンで換算した場合のタンパク質濃度で示した。wheycreamserumはウシラクトフェリンを上回る強力な抗ロタウィルス活性を示した。以上より、抗ロタウィルス感染組成物はホエイから遠心分離処理のみで調製可能なことが明らかとなった。[実施例11]95°Cで30分間加熱処理した脱脂乳から得られるホエイを硫安沈殿と遠心分離処理して調製した抗ロタウィルス感染組成物搾乳した未加熱の原乳10kgに遠心分離処理8000g、15分間、4°Cを行い、クリームを分離して脱脂乳を得た。この脱脂乳を加熱処理し、05NHClを添加してpH46とした。この状態で15~30分間保持した後、遠心分離処理5000g、30分間、4°Cを行い、カゼインを分離して酸ホエイを得た。この酸ホエイに硫酸アンモニウムを加え、35飽和の状態とした。この溶液を遠心分離処理7000g、30分間、4°Cして沈殿物を除去した。沈殿除去した溶液に再度硫酸アンモニウムを加え、55飽和の状態とした。この溶液を遠心分離処理7000g、30分間、4°Cして再び沈殿物を除去した。得られた溶液にさらに硫酸アンモニウムを加え、90飽和の状態とした。最後にこの溶液を遠心分離処理7000g、30分間、4°Cして沈殿物を回収した。90飽和で得られた沈殿物は蒸留水に溶解後、蒸留水に対して透析し、常法により凍結乾燥し、試験試料とした。[実施例12]95°Cで30分間加熱処理した脱脂乳から得られるホエイを硫安沈殿と遠心分離処理して調製した抗ロタウィルス感染組成物のロタウィルス感染阻害活性の測定材料および方法原乳を用いて前述した実施例11と同一の方法により製造した抗ロタウィルス感染組成物のロタウィルス感染阻害活性を実施例6と同一の方法により測定した。結果と考察90飽和沈殿物は50μgmlの最小阻害濃度を示した。95°Cで30分間加熱処理した脱脂乳から得られるホエイ、いわゆるプロテオースペプトンの硫安沈殿処理画分が抗ロタウィルス活性を有することが明らかとなった。[実施例13]ゲル濾過カラムと硫安を用いた抗ロタウィルス感染組成物の活性成分の分画原乳を用いて前述した実施例5と同一の方法により製造した乳由来組成物の活性成分をさらに分画した。実施例5で保持液をスプレードライして得られた粉末を蒸留水に5となるように溶解後、95°C30分間の加熱処理を加えた。この溶液の一部を下記のTrisHCl緩衝液に対して一晩透析し、ゲル濾過試料とした。SephacrylS500HRを約480ml取り、数回のデカンテーションにより溶媒をMilliQ水超純水に置き換えた。ゲルを均一になるように攪拌し、リザーバーを装着したカラム26×60cmに静かに流し込んだ後、空気が入らないようリザーバーにMilliQ水を充たし蓋をした。カラムをAKTAexplorer10Cアマシャムファルマシアバイオテクに接続し、MilliQ水を流してゲルを十分に沈積させた後、リザーバーを外してアダプターを装着した。このカラムをpH80の005MTrisHCl緩衝液015MNaCl、1mMNa2EDTA、002NaN3により平衡化した。上述の試料をカラムに11ml添加してから流速13ml分で溶出させた。この際、溶出液の280nmにおける吸光度の変化を調べ、ほとんど素通りしてくる画分C1を回収した。このC1画分を蒸留水に対して一晩透析後、一部は常法により凍結乾燥し、試験試料とした。残りは実施例11と同様に硫安を用いてさらに分画した。すなわち、このC1画分溶液に硫酸アンモニウムを加え、35飽和の状態とした。この溶液を遠心分離処理7000g、30分間、4°Cして沈殿物を除去した。沈殿除去した溶液に再度硫酸アンモニウムを加え、55飽和の状態とした。この溶液を遠心分離処理7000g、30分間、4°Cして再び沈殿物を除去した。得られた溶液にさらに硫酸アンモニウムを加え、90飽和の状態とした。最後にこの溶液を遠心分離処理7000g、30分間、4°Cして沈殿物を回収した。90飽和で得られた沈殿物は蒸留水に溶解後、蒸留水に対して透析し、常法により凍結乾燥し、試験試料とした。[実施例14]抗ロタウィルス感染組成物をゲル濾過SephacrylS500カラムと硫安で分画して得た成分のロタウィルス感染阻害活性の測定原乳を用いて前述した実施例13と同一の方法により製造した成分のロタウィルス感染阻害活性を実施例6と同一の方法により測定した。各試料の抗ロタウィルス活性の測定結果を表6に示した。実験試料の最小阻害濃度は、ウシ血清アルブミンで換算した場合のタンパク質濃度で示した。ゲル濾過カラム後の硫安塩析により活性成分が濃縮されることが明らかとなった。[実施例15]遠心分離および限外濾過処理による抗ロタウィルス感染組成物の活性成分の分画原乳を用いて前述した実施例5と同一の方法により製造した乳由来組成物の活性成分をさらに分画した。実施例5で保持液をスプレードライして得られた粉末を蒸留水に10となるように溶解後、05NHClを添加してpH46とした。この状態で15~30分間保持した後、遠心分離処理6000g、20分間、4°Cを行い、沈殿画分と上清画分に分けた。沈殿画分は再度蒸留水に分散させた後、常法により凍結乾燥して試験試料Aとした。上清画分は分画分子量1万の限外濾過膜を用いて限外濾過処理に供した。処理温度は20~25°Cであった。最初に上清画分を限外濾過膜で1/4に濃縮し、次に濃縮液を4倍に加水希釈し、その後再び容量が1/4になるように透析濾過を行った。最後に得られた限外濾過膜の保持液を常法により凍結乾燥して試験試料Bとした。[実施例16]抗ロタウィルス感染組成物を遠心分離および限外濾過処理で分画して得た成分のロタウィルス感染阻害活性の測定材料および方法原乳を用いて前述した実施例15と同一の方法により製造した成分のロタウィルス感染阻害活性を実施例6と同一の方法により測定した。なお、比較のために未分画の試料を対照試料として用いた。結果と考察各試料の抗ロタウィルス活性の測定結果を表7に示した。実験試料の最小阻害濃度は、ウシ血清アルブミンで換算した場合のタンパク質濃度で示した。遠心分離および限外濾過処理により活性成分が濃縮されることが明らかとなった。