"凍結精子を調製するための、以下:A採精した精液から直ちに精漿を除去した精子を100~1000mOsm/kgの浸透圧に維持するための溶液;および、B上記Aの溶液を用いて100~1000mOsm/kgの浸透圧に維持した精子に添加して、グリセロール終濃度を0.5~10とするためのグリセロール溶液、との組み合わせ。請求項1に記載の組み合わせであって、ここで、前記Aの浸透圧が400mOsm/kgである、組み合わせ。請求項1に記載の組み合わせであって、ここで、前記Aの溶液がグルコース又はラクトースを含む、組み合わせ。請求項1に記載の組み合わせであって、ここで、前記Aの溶液が卵黄を含む、組み合わせ。請求項1に記載の組み合わせであって、ここで、前記Bのグリセロール終濃度が2である、組み合わせ。非ヒト哺乳動物の凍結精子であって、以下の工程:a採精する工程;b該採精した精液から直ちに精漿を除去する工程;c該精漿を除去した精子を100~1000mOsm/kgの浸透圧に維持する工程;d工程cで得られた精子溶液にグリセロール溶液を添加して、グリセロール終濃度を0.5~10とする工程;および、e工程dで得られた精子溶液を凍結する工程、を包含する方法によって得られた、凍結精子。前記非ヒト哺乳動物が家畜である、請求項6に記載の凍結精子。前記家畜がブタである、請求項7に記載の凍結精子。請求項6に記載の凍結精子であって、ここで、前記工程cの浸透圧が400mOsm/kgである、凍結精子。請求項6に記載の凍結精子であって、ここで、前記工程cの溶液がグルコース又はラクトースを含む、凍結精子。請求項6に記載の凍結精子であって、ここで、前記工程cの溶液が卵黄を含む、凍結精子。請求項6に記載の凍結精子であって、ここで、前記工程dのグリセロール終濃度が2である、凍結精子。非ヒト哺乳動物の人工授精法であって、以下:1以下の工程を包含する方法で調製した凍結精子を融解する工程;a採精する工程;b該採精した精液から直ちに精漿を除去する工程;c該精漿を除去した精子に対して、精子を100~1000mOsm/kgの浸透圧に維持するための溶液を添加して、該精子を100~1000mOsm/kgの浸透圧に維持する工程;d工程cで得られた精子溶液にグリセロール溶液を添加して、グリセロール終濃度を0.5~10とする工程;および、e工程dで得られた精子溶液を凍結する工程、2該融解した精子に、哺乳動物の精漿を添加して、精子溶液を調製する工程;ならびに、3工程2で調製した精子溶液を用いて、該非ヒト哺乳動物に人工授精する工程、を包含する方法。請求項13に記載の方法であって、ここで、前記工程cの後に、該溶液を4~5°Cまで冷却することを特徴とする、方法。請求項13に記載の方法であって、ここで、前記工程cの浸透圧が400mOsm/kgである、方法。請求項13に記載の方法であって、ここで、前記工程cの溶液がグルコース又はラクトースを含む、方法。請求項13に記載の方法であって、ここで、前記工程cの溶液が卵黄を含む、方法。請求項13に記載の方法であって、ここで、前記工程dのグリセロール終濃度が2である、方法。凍結精液を作出し、それを用いた人工授精を普及させるために、耐凍性の低い品種個体において安定的に凍結精液を作出できる技術を提供することを、本発明の課題とする。本発明者らは、精漿を採精後即座に除去して凍結した精子が融解後に高い運動性を維持すること、精漿を除去して凍結した精子を融解した場合に融解直後に受精可能な精子へと変化するために受胎効率が低下すること、および、精漿を除去して凍結し融解の際に精子に精漿を添加すると受精能獲得及び先体反応が抑制されその結果受胎率が上昇することを見出して、本発明を完成させた。従って、本発明は、以下を提供する。項目1精漿を除去し、凍結した哺乳動物の精液。項目2前記哺乳動物が非ヒト哺乳動物である、項目1に記載の精液。項目3前記非ヒト哺乳動物が家畜である、項目2に記載の精液。項目4前記家畜がブタである、項目3に記載の精液。項目5精漿を除去し、凍結した哺乳動物の精液を含有する、人工授精のための組成物。項目6前記哺乳動物が非ヒト哺乳動物である、項目5に記載の組成物。項目7前記非ヒト哺乳動物が家畜である、項目6に記載の組成物。項目8前記家畜がブタである、項目7に記載の組成物。項目90.5~10グリセロールを含有する、項目5に記載の組成物。項目10哺乳動物の精漿を含有する、該哺乳動物の精子の受精能獲得及び先体反応抑制剤。項目11前記哺乳動物が非ヒト哺乳動物である、項目10に記載の受精能獲得及び先体反応抑制剤。項目12前記非ヒト哺乳動物が家畜である、項目11に記載の受精能獲得及び先体反応抑制剤。項目13前記家畜がブタである、項目12に記載の受精能獲得及び先体反応抑制剤。項目14前記精子が、精液から精漿を除去して調製された精子である、項目10に記載の受精能獲得及び先体反応抑制剤。項目15前記精子が、精液から精漿を除去して調製され、凍結後に融解した精子である、項目10に記載の受精能獲得及び先体反応抑制剤。項目16人工授精のための、哺乳動物の人工授精用精子の調製法であって、以下:a採精する工程;b採精した精液から精漿を除去して精子を調製する工程;および、g該精子を凍結する工程、を包含する、方法。項目17さらに、c前記工程bにおいて精液から精漿を除去することにより調製した精子を、0.33Mグルコース、12.8mMクエン酸ナトリウム、14.3mM炭酸水素ナトリウム、および9.9mMEDTA-2Naを含有する溶液中で維持する工程、を包含する、項目16に記載の方法。項目18さらに、以下:d前記工程cで維持した精子を遠心処理する工程;e上澄みを除去し、精子を浸透圧が100~1000mOsm/kgの溶液中に維持する工程、を包含する、項目17に記載の方法。項目19さらに、以下:f前記工程eで調製した精子を含む溶液に、0.5~10グリセロールを添加する工程、を包含する、項目18に記載の方法。項目20前記哺乳動物が非ヒト哺乳動物である、項目16に記載の方法。項目21前記非ヒト哺乳動物が家畜である、項目20に記載の方法。項目22前記家畜がブタである、項目21に記載の方法。項目23哺乳動物の人工授精のための精子の調製法であって、以下:h項目16に記載の方法で調製した凍結精子を融解する工程;および、i該融解した精子に、哺乳動物の精漿を添加する工程、を包含する方法。項目24哺乳動物の人工授精法であって、以下:h項目16に記載の方法で調製した凍結精子を融解する工程;i該融解した精子に、哺乳動物の精漿を添加して、精子溶液を調製する工程;および、j工程iで調製した精子溶液を用いて、該哺乳動物に人工授精する工程、を包含する方法。本発明に従って、耐凍性の低い品種個体においても安定的に凍結精液を作出できる技術が提供される。その結果、凍結精液を用いた人工授精を哺乳動物種や家畜の品種に拘らず適用することが可能となる。以下、本発明を説明する。本明細書の全体にわたり、単数形の表現は、特に言及しない限り、その複数形の概念をも含むことが理解されるべきである。また、本明細書において使用される用語は、特に言及しない限り、当該分野で通常用いられる意味で用いられることが理解されるべきである。以下に本明細書において特に使用される用語の定義を列挙する。本明細書において使用する場合、用語精漿とは、精液の液体成分をいう。本明細書において使用する場合、用語精子とは、精液の細胞成分をいう。本明細書において使用する場合、用語精漿の除去とは、精液から、液体成分の少なくとも一部を除去する工程をいう。本明細書において使用する場合、用語家畜とは、家畜かちくとは、人間が利用するために飼育する動物をいう。家畜としては、ウシ、ブタ、ヒツジ、ヤギが挙げられるが、これに限定されない。本明細書において使用する場合、用語先体反応とは、精子が卵表面に達した時に生じる精子の頭部先端での反応をいう。哺乳動物の精子の先体反応としては、ヒアルロニダーゼの放出、タンパク質分解酵素の放出が挙げられるが、これに限定されない。本明細書において使用する場合、用語先体反応抑制剤とは、哺乳動物の先体反応の少なくとも1つを抑制する作用を有する物質をいう。従って、哺乳動物の精子の先体反応としてのヒアルロニダーゼの放出およびタンパク質分解酵素の放出の少なくとも1つを抑制する物質は、本発明の先体反応抑制剤である。本発明の一つの局面においては、凍結した精子を用いる高効率人工授精が提供される。本発明において、限定されることはないが、採精後精液から精漿を即座に除去し凍結させた凍結精子が提供される。本発明において、精漿を除去した凍結精子を融解すると、直ちに受精能を獲得し、先体反応を生じるために、人工授精の効率が低くなることを見出した。さらに、本発明において、凍結した精子を融解することによって生じる受精能獲得と先体反応を、精漿によって抑制可能であることを見出した。このように受精能獲得と先体反応が抑制された精子は、人工授精効率を高めることが見出された。従って、本発明の一つの局面においては、精漿を採精後即座に除去し凍結した精子の融解時、又は融解後直ちに精漿を添加する、人工授精用精子の調製法が提供される。理論に拘束されることは望まないが、上記発明は、以下のように理解できる。精子の受精能獲得は雌生殖器道内で誘起され、その後、卵子近傍において先体反応を起こし、卵膜を溶かし精子が卵子内に侵入する。受精能獲得精子は運動性が著しく増加し寿命が短い。そのため,受精能獲得および先体反応というこれら2つの現象は雌生殖器道内で誘起されることが望ましく、高効率の人工授精を成功させるためには両方を抑制した条件が必要であると考えられる。精子を凍結する際には、0.5~10終濃度グリセロールを含有すると人工授精効率が向上するため、必要に応じて、凍結前精子に、グリセロールを添加する。精液から精漿を採精後即座に除去して調製した精子を、維持するのに好ましい緩衝液は、限定されることはないが、代表的には、0.33Mグルコース、12.8mMクエン酸ナトリウム、14.3mM炭酸水素ナトリウム、および9.9mMEDTA-2Naを含む緩衝液である。また、この緩衝液に維持した後、精子を浸透圧が100~1000mOsm/kgの溶液中に維持することによって、人工授精効率を向上することも可能である。方法と材料例示としてブタを用いる代表的な方法と材料は、以下のとおりであるが、本発明はこれらに限定されない。1.使用するブタの体重使用するブタの体重は、限定されることはないが、約350kg前後を目安とする。2.採精前の動物の管理条件採精に使用する雄ブタを、それぞれ個々の豚房で別々に飼育し、朝、夕の2回、計2.5kgの種ブタ用飼料を給餌する。ブタには、日本脳炎豚パルボウイルス感染症ワクチンの接種を行う。本検討には、豚繁殖呼吸障害症候群PRRS、オーエスキー病に対して抗体陰性のブタを選択する。採精は、1週間間隔をあけて行う。採精前は、餌食い、病気の兆候等を確認し、良好なブタであることを確認し、ブタを興奮させないように採精を行う。3.採精法擬牝台を雄ブタの豚房に入れ、雄ブタを台に乗せる。ペニスおよび包皮内を生理食塩水で洗浄し、尿を除去する。採精は、手圧法で行い、あらかじめ滅菌したカップにガーゼをかぶせ、精液と共に出るゼリー状の物質である膠様物を除去しながら、精液をカップに入れる。精液は、始めの50~100mLの濃厚部全精液量の約8割の精子が存在するのみを採取する。4.精漿の除去法採精後遠心分離によって精漿を精液から即座に除去する。遠心分離の条件は限定されないが、代表的には、採取した精液をすぐに実験室に運び、遠心分離機を用いて2,000rpm、3分間精子と精漿を分離し、上澄み精漿を除去する。その後すぐに前処理液0.33Mグルコース、12.8mMクエン酸ナトリウム、14.3mM炭酸水素ナトリウム、9.9mMEDTA-2Na、1,000IU/mlのペニシリン、および1mg/mlストレプトマイシンを含有する溶液を用い沈殿精子を懸濁し、上記と同様に遠心分離し、上澄みを除去して完全に精漿を除去する。その後、前処理液を用い精子を希釈し、2~3時間かけて15°Cにする。5.精漿を除去した精子の凍結法精漿を除去した精子を数時間例えば、2~3時間かけて、室温から15°C程度にし、遠心による上清除去後、浸透圧が100~1000mOsm/kg好ましくは、400mOsm/kgの溶液中好ましくは、031Mラクトース液400mOsmkgに調整80,卵黄20,1000IUmlペニシリン,1mgmlストレプトマイシンの溶液に約1~2時間維持しながら、4~5°Cまで冷却する。次に耐凍剤例えば、1~20程度のグリセロール好ましくは、添加後の終濃度2と015添加後の終濃度のOEPOrvusEsPaste界面活性剤を添加する。この場合の精子濃度を1×107細胞/ml~1×1010細胞/ml、好ましくは、1×109細胞/mlにする。凍結時は精子はこの濃度で,融解時融解液の中では1×108細胞/mlである.耐凍剤の添加後、30分程度、4~5°Cに保ち、その後、凍結する。凍結には、液体窒素またはプログラムフリーザーを用いることができる。液体窒素を用いる凍結法は、ストローに精漿を除去した精子を充填後、液体窒素表面から数センチ例えば、4cm程度離したところで液体窒素蒸気中で10分間凍結し、その後、液体窒素中で保存する方法である。6.精漿の調製法精漿としては、遠心分離によって精液から精子を除去した後、さらに、遠心分離によって、その上清から固体の混入物を除去することによって、調製することが可能である。好ましくは、そのようにして調製した精漿に、モデナ液0.15Mグルコース、26.7mMクエン酸ナトリウム、11.9mM炭酸水素ナトリウム、15.1mMクエン酸、6.3mMEDTA-2Na、46.6mMトリスおよび1,000IU/mlペニシリンのような液体を添加して、希釈する。7.精子運動率の測定精子運動性を、運動性解析装置:AcomputerassistedspermmotilityanalysisCASAsystemを使用して測定する。凍結後融解した精子を、37°Cのモデナ液中にてインキュベーションした後、37°Cに温まったプレートの上に5μlの精液を載せて、コンピューターにより動いている精子の割合を解析する。8.先体反応の評価方法精子先体の正常率は、FITCでラベルしたpeanutagglutininFITC-PNASigmaおよびpropidiumiodidePIでの二重蛍光染色法により測定する。凍結後融解した精子を、モデナ液で1:10v/vに希釈し、その後、この混合物をスライド上に引き延ばし、そして室温で空気乾燥する。上記混合物を、室温で10分間、無水メタノールで固定する。PBS中の30μLのFITC-PNA溶液100μL/mlを、それぞれのスライド上に広げる。スライドをその後、38°Cで20分間、インキュベーター内38°C,5CO2でインキュベートし、続いて、PI染色溶液の添加、そしてさらに10分間のインキュベーションを行う。上記混合物を、その後PBSで十分に洗浄し、空気乾燥し、そしてその後、10μlのアンチフェード溶液グリセロール:PBS,1:1にのせ、蛍光を保たせる。カバーグラスをその後あてがい、端を無色のマニキュア液で封をする。FITC-PNAは、精子先体にある糖鎖を認識し結合する。FITCは緑色の蛍光を発色する。先体は、先体反応を誘起していなければきれいに染色され、先体反応を誘起していれば緑色が欠けたり、発色しない。PIは細胞の核を赤色に染色する。以上から、先体反応を、誘起していない精子は赤色プラス緑色を示し、誘起している精子は赤プラス若干の緑または赤のみを呈す。9.受精能獲得の測定法精子が卵子に侵入する能力を獲得することを受精能獲得とよぶ。受精能獲得の生化学的現象の1つにタンパクのチロシンリン酸化がある。このリン酸化は精子受精能獲得の指標となっておりウェスタンブロット法で確認される。ウェスタンブロット法の代表的方法を、以下に説明する。-80°Cで保存した精子にSDSサンプル緩衝液17μlを添加し、ピペッティングする。10,000rpm2分間遠心し、超音波処理を2分行ない、その後、100°Cで5分加熱し、100Vで2時間程度泳動する。メンブランに転写し、5BSA添加TBSでのブロッキング後、0.5BSAおよび0.1Tween20を添加したTBS20mMTris-HCl、pH7.5、0.15MNaClに1:2,000希釈した抗リン酸化チロシン抗体一次抗体、マウスIgGを添加し、メンブランに12時間4°Cで反応させる。0.1Tween20を添加したTBSで2時間洗浄後、0.5BSAおよび0.1Tween20を添加したTBSに1:2,000希釈した抗マウスIgG抗体二次抗体を1時間反応させる。0.1Tween20を添加したTBSで1時間洗浄する。発色基質を添加し、5分間反応させ、フィルムに感光させる。10.発情期同期方法発情期同期を、Kikuchietal.1999の方法により行う。繁殖に使用する雌ブタの発情期同期化は:1離乳後24時間で、1000IUのPMSGpregnantmareserumgonadotropinVETERINARYPEAMEX,Sankyo,Tokyo,Japanの注射、続いて72時間後、500IUのhCGの注射により誘導;2PMSG投与開始2日後に、発情期検出を日に2回09:00および16:00実行する;3hCG投与から40時間後、雌ブタをランダムに各群に分けることにより行った。11.統計分析各検討のデータは、平均±標準誤差で示す。データは、Excel登録商標統計を使用して分析する。データは一元配置分散分析で検定後,Fisherの最小有意差法を用いた。12.凍結した精子の融解凍結した精子の融解は、限定されることはないが、代表的には、5mlストローの場合は37°Cで60秒、05mlストローの場合には35°Cで20秒、好ましくは37°Cで20秒、より好ましくは70°Cで8秒、最も好ましくは60°Cの温水中8秒間で行う。あるいは、凍結した精子に直接、精漿を添加してもよい。13.精漿の添加凍結した精子の融解後即座に、または、融解時に、精漿を添加する。精漿は、精子を提供した個体と異なる個体由来であっても、同一の個体由来であってもよい。添加する精漿の量は、融解液好ましくはモデナ液組成は技術説明に記載に精子の終濃度が、1×106細胞/ml~1×109細胞/ml、好ましくは、1×108細胞/mlになるよう添加する.以下に、実施例に基づいて本発明を説明するが、以下の実施例は、例示の目的のみに提供される。従って、本発明の範囲は、上記発明の詳細な説明にも下記実施例にも限定されるものではなく、請求の範囲によってのみ限定される。実施例1:精子凍結における精漿除去の影響ランドレース種雄性ブタ24ヶ月齢、体重およそ350kg前後7頭から、精液を採取し、それぞれの精液を半分づつ、精漿除去を行わない常法群および精漿除去法を実施する群に分けた。これらの常法群と精漿除去法群それぞれにおいてインキュベーション時間は1および3時間、凍結後に融解した精子の運動性精子運動率:泳いでいる精子の割合を、運動性解析装置Computer-assistedspermmotilityanalysisCASAsystemを用いて測定した。その結果、図1に示すように、上記7頭中5頭においては、それぞれの手法群間において精子運動率の差が認められなかったが、図2に示すように、残りの2頭においては、常法群において融解後の運動率が低く、精漿除去法群において有意に高い運動性が認められた。一般的に、凍結融解後の精子の受精能力、すなわち凍結能、が低いことが知られている、大ヨークシャー種における精漿除去の影響を検討した結果、いずれの個体においてもn=5、常法による凍結では融解後の精子運動性は低く、精漿除去の有効性が認められた図3。以上の結果から、耐凍性の低い個体および耐凍性の低い品種において、採精後、直ちに精漿を除去し、続いて凍結する方法が有効的である事が明らかとなった。実施例2:常法と精漿除去法により作出した凍結精液を用いた人工授精ランドレース種雄性ブタにおいて、常法および精漿除去法により作出した凍結精液の人工授精に対する影響を検討した。採精後、精液を、A処理区:液状精液、B処理区:常法により作出し、融解後の精子運動性が高かった精液、C処理区:常法により作出し、融解後の精子運動性が低かった精液、D処理区:C処理区から採取した精液を精漿除去法により凍結した精液、の各群に分けた。これらの各群の精液を、それぞれ発情同期化させた雌性ブタn=5頭×4処理区に人工授精し、受胎率を検討した。発情同期化は、発情4日前に血清性性腺刺激ホルモンPMSG1,000IU/頭を注射し、そして、PMSG後72時間後にヒト胎盤性性腺刺激ホルモンhCG750IU/頭を投与し、過排卵処理を施すことで行い、人工授精は、hCG投与後40時間後に行った。人工授精後,21日目に超音波妊娠鑑定にて胎児をモニターで確認するブタは21日周期で発情がくるため,受精後21日目に妊娠鑑定をする際,授精していない,もしくは受精卵が退行した等があれば,陰部は発情の兆候を示している。また、同時に21日目にノンリターン法にて再発情リターンがきているかもどうかも確認し、妊娠を決定する。その結果、C群の精子運動性が低い精液、およびD群の精漿除去法により精子運動性が回復した精液の両群において、雌性ブタの受胎を全く確認できなかった図4。以上から、精液の凍結過程においては、精漿の除去が精子の正常性を維持させるが、精子の本来の受精機能を果たす条件下例えば、常温下および体内などが挙げられるにおいては、精漿の存在が精子の機能に必要であることが明らかとなった。実施例3:精漿除去法により作出した凍結精子の融解後の機能性精漿除去法による凍結精子が、融解後、負の影響を示す原因を明らかにするため、常法による凍結法においても高い運動性を示す精子を含む精液を用いて以下の実験を行った。精子の受精能獲得受精前に精子の運動性が著しく向上する現象の指標として、精子タンパク質のチロシン残基のリン酸化検出図5、および精子が卵子に進入する際に誘起させる先体反応精子が卵子に進入し受精するため、精子が卵表面に到達したときに精子頭部の先体内の酵素を分泌し、先体膜が破れ変化する現象を糖鎖検出試薬による検出図6を行った。その結果、精漿除去区において、チロシンリン酸化バンドが検出され、そのリン酸化は4倍以上に上昇していた図7。また、先体反応を誘起させている精子の割合も精漿除去によって増加した図8。以上の結果から、精漿除去法により調製した凍結精子は融解直後に受精可能な精子へと変化するため、人工授精により雌個体に注入しても、卵子が存在する卵管まで到達しないために、体内で受精が認められないことが明らかとなった。実施例4:融解液への精漿添加が精子に及ぼす影響精漿除去法により作出した凍結精子は、融解後に自発的に受精可能な状態へと変化することにより、体内において受精が認められないことが明らかとなった、そこで、この精子の自発的な受精状態への変化を抑制することを目指して、凍結過程で除去した精漿に精子を融解時に速やかに暴露する影響を検討した。精子は、常法において凍結融解後の著しく運動性が低い個体から採取し、精漿除去法により凍結を行い、その凍結精液を、精漿を0、5、10、20添加した融解液を用いて融解し、その後のチロシンリン酸化、先体反応への影響を検討した培養時間は、1、3、および6時間。その結果、融解後の自発的なチロシンリン酸化が10の精漿添加により抑制され図9、先体反応誘起率も有意に低下していた図10。以上の結果から、融解液への精漿添加により、受精能獲得及び先体反応誘起率を抑制することが確認された。実施例5:新規凍結精液作製、融解法を用いて作製した凍結融解精液の人工授精凍結融解後の運動性が低い個体、品種においてn=3個々のデータを表1に示す、精液採取後、直ちに精漿を除去して凍結し、融解時に精漿に暴露するという本研究による新手法が、人工授精時における受胎率および一腹産子数に及ぼす影響を検討した。その結果、A液状精液およびB常法で作出した凍結融解後運動性の高い精子を用いた人工授精では高い受胎率および一腹産子数が得られたが、C耐凍性の低い個体の精液を精漿除去法で凍結した精子、は図4と同様に受胎が全く認めれなかった。しかし、D新手法で凍結融解した精子、において、AとBと同等の高い受胎率と一腹産子数が得られた図11および図12。表:凍結融解後の運動性が低い個体の精漿除去凍結人工授精L=ランドレース、W=大ヨークシャー、D=デュロック、LW=交雑種。実施例6:開発した精子凍結、融解、人工授精法採精~凍結の方法採精後、10分以内に遠心分離2,000rpm、3分で精子と精漿を分離、上澄み精漿を除去し、前処理液0.33Mグルコース、12.8mMクエン酸ナトリウム、14.3mM炭酸水素ナトリウム、9.9mMEDTA-2Na、1,000IU/mlのペニシリン、および1mg/mlストレプトマイシンを含有する溶液中で希釈し、続いて室温放置し、2~3時間かけて15°Cにする。その後、遠心処理2、000rpm、5分し、上澄みを除去する。1次希釈液である、修正NiwaandsasakifreezingextenderNSF10.31Mラクトース液400mOsm/kgに調製80および卵黄20に1,000IU/mlのペニシリンおよび1mg/mlストレプトマイシンを添加で希釈し、1.5時間かけて徐々に低下させ5°Cに保持する。その後、2次希釈液である、修正NFS2NSF1に1.5OEPOrvusEsPaste界面活性剤、4グリセロールを添加で希釈し、最終精子濃度を10億/mlに調製し、この最終調製精子を、0.5mlストローに充填する。続いて、上記最終調製されたストローを液体窒素蒸気中で10分間放置する。その後、液体窒素中で保管を行う。2次希釈液での希釈から、液体窒素蒸気中への放置までの時間は30分間で行う。凍結に用いたNSFは、30年来用いられている、公知の処理液であり、本発明者らは、この処理液の最適浸透圧、グリセロールの濃度の組み合わせを探索し、浸透圧400mOsm/kg、グリセロール濃度4終濃度2へと改良した。融解~人工授精の方法凍結精液を液窒素より取り出し、60°Cの温水中で8秒間で融解し、即座に、モデナ液0.15Mグルコース、26.7mMクエン酸ナトリウム、11.9mM炭酸水素ナトリウム、15.1mMクエン酸、6.3mMEDTA-2Na、46.6mMトリスおよび1,000IU/mlのペニシリンに10v/v精漿を添加した融解液中に入れる精子濃度1億/ml。精漿の作製保存方法通常の液状精液で受胎率80以上産子数10頭以上の高い繁殖能力を持った雄ブタから、採精し、3,000rpm、20分、遠心し、精子を除去後、上澄みの精漿をさらに10,000回転で30分遠心し、この上澄みのみをモデナ液で1:1で希釈し、-20°C以下で保存する。この上澄み液を、10添加する精漿として使用する。人工授精する際、添加する精漿は精子に対して別の個体品種のものであってもよい保存精漿には精子は入っていない。人工授精用ボトルに50ml総精子数50億入るようにする。雌ブタ発情同期化方法人工授精に用いた雌ブタは、発情4日前に血清性性腺刺激ホルモンPMSG1,000IU/頭を注射し、そして、PMSG後72時間後にヒト胎盤性性腺刺激ホルモンhCG750IU/頭を投与し、過排卵処理を施し、発情同期化させ、hCG投与後40時間後に人工授精を行った。分娩は、人工授精後114日後である。以上のように、本発明の好ましい実施形態を用いて本発明を例示してきたが、本発明は、この実施形態に限定して解釈されるべきものではない。本発明は、特許請求の範囲によってのみその範囲が解釈されるべきであることが理解される。当業者は、本発明の具体的な好ましい実施形態の記載から、本発明の記載および技術常識に基づいて等価な範囲を実施することができることが理解される。本明細書において引用した特許、特許出願および文献は、その内容自体が具体的に本明細書に記載されているのと同様にその内容が本明細書に対する参考として援用されるべきであることが理解される。"