"生分解性材料から構成される多孔質体であって以下の特性を有する多孔質体からなる細胞支持体。a気孔率:81以上99.99以下b平均気孔サイズ:10~400μmc気孔間連通孔を有する、及びd吸水率:1000以上9900以下生分解性材料のGrandaverageofhydropathicityGRAVY値が、0.3以下-5.0以上である、請求項1に記載の細胞支持体。生分解性材料が、蛋白質、ポリペプチド、ポリ乳酸、ポリグリコール酸、PLGA、キチン、キトサン、セルロース及びヒアルロン酸から選択される少なくとも1種以上である、請求項1又は2に記載の細胞支持体。生分解性材料が、天然又は遺伝子組み換えゼラチン、天然又は遺伝子組み換えフィブロネクチン、あるいは天然又は遺伝子組み換えラミニンである、請求項1から3の何れか1項に記載の細胞支持体。生分解性材料が架橋されている、請求項1から4の何れか1項に記載の細胞支持体。架橋がアルデヒド類、縮合剤、又は酵素により施される、請求項1から5の何れか1項に記載の細胞支持体。生分解性材料が、遺伝子組み換えゼラチンである、請求項1から6の何れか1項に記載の細胞支持体。遺伝子組み換えゼラチンが、式:A-[Gly-X-Yn]m-B式中、Aは任意のアミノ酸又はアミノ酸配列を示し、Bは任意のアミノ酸又はアミノ酸配列を示し、n個のXはそれぞれ独立にアミノ酸の何れかを示し、n個のYはそれぞれ独立にアミノ酸の何れかを示し、nは3~100の整数を示し、mは2~10の整数を示す。なお、n個のGlyXYはそれぞれ同一でも異なっていてもよい。で示される、請求項1から7の何れか1項に記載の細胞支持体。遺伝子組み換えゼラチンが、式:GlyAlaPro[Gly-X-Y63]3-Gly式中、63個のXはそれぞれ独立にアミノ酸の何れかを示し、63個のYはそれぞれ独立にアミノ酸の何れかを示す。なお、63個のGlyXYはそれぞれ同一でも異なっていてもよい。で示される、請求項1から8の何れか1項に記載の細胞支持体。遺伝子組み換えゼラチンが、1配列番号1に記載のアミノ酸配列、又は2配列番号1に記載のアミノ酸配列と80以上の相同性を有し、生分解性を有するアミノ酸配列、を有する、請求項1から9の何れか1項に記載の細胞支持体。生分解性材料を架橋した後、攪拌し、その後に凍結乾燥することによって製造される、請求項1から10の何れか1項に記載の細胞支持体。請求項1から11の何れか1項に記載の細胞支持体を含む再生医療材料。請求項1から11の何れか1項に記載の細胞支持体と移植細胞とを含む、再生医療材料。生分解性材料から構成される多孔質体であって以下の特性を有する多孔質体からなる骨再生材。a気孔率:81以上99.99以下b平均気孔サイズ:10~400μmc気孔間連通孔を有する、及びd吸水率:1000以上9900以下生分解性材料のGrandaverageofhydropathicityGRAVY値が、0.3以下-5.0以上である、請求項14に記載の骨再生材。生分解性材料が、蛋白質、ポリペプチド、ポリ乳酸、ポリグリコール酸、PLGA、キチン、キトサン、セルロース及びヒアルロン酸から選択される少なくとも1種以上である、請求項14又は15に記載の骨再生材。生分解性材料が、天然又は遺伝子組み換えゼラチン、天然又は遺伝子組み換えフィブロネクチン、あるいは天然又は遺伝子組み換えラミニンである、請求項14から16の何れか1項に記載の骨再生材。生分解性材料が架橋されている、請求項14から17の何れか1項に記載の骨再生材。架橋がアルデヒド類、縮合剤、又は酵素により施される、請求項14から18の何れか1項に記載の骨再生材。生分解性材料が、遺伝子組み換えゼラチンである、請求項14から19の何れか1項に記載の骨再生材。遺伝子組み換えゼラチンが、式:A-[Gly-X-Yn]m-B式中、Aは任意のアミノ酸又はアミノ酸配列を示し、Bは任意のアミノ酸又はアミノ酸配列を示し、n個のXはそれぞれ独立にアミノ酸の何れかを示し、n個のYはそれぞれ独立にアミノ酸の何れかを示し、nは3~100の整数を示し、mは2~10の整数を示す。なお、n個のGlyXYはそれぞれ同一でも異なっていてもよい。で示される、請求項14から20の何れか1項に記載の骨再生材。遺伝子組み換えゼラチンが、式:GlyAlaPro[Gly-X-Y63]3-Gly式中、63個のXはそれぞれ独立にアミノ酸の何れかを示し、63個のYはそれぞれ独立にアミノ酸の何れかを示す。なお、63個のGlyXYはそれぞれ同一でも異なっていてもよい。で示される、請求項14から21の何れか1項に記載の骨再生材。遺伝子組み換えゼラチンが、1配列番号1に記載のアミノ酸配列、又は2配列番号1に記載のアミノ酸配列と80以上の相同性を有し、生分解性を有するアミノ酸配列、を有する、請求項14から22の何れか1項に記載の骨再生材。生分解性材料を架橋した後、攪拌し、その後に凍結乾燥することによって製造される、請求項14から23の何れか1項に記載の骨再生材。請求項14から24の何れか1項に記載の骨再生材を含む再生医療材料。請求項14から24の何れか1項に記載の骨再生材と移植細胞とを含む、再生医療材料。本発明は、上記した従来技術の問題点を解消することを解決すべき課題とした。即ち、本発明は、細胞を均一に分布させムラのない状態で保持でき、かつ生体内で分解される素材で構成されている三次元の細胞支持体を提供することを課題とした。更に本発明は、足場基材単独でも骨再生能力を有するような骨再生材、更には骨再生に適していないとされるゼラチン素材であっても骨再生能力を有するような骨再生材を提供することを課題とした。更に本発明は、上記の細胞支持体または骨再生材を用いた医療材料を提供することを課題とした。本発明者らは上記課題を解決するために鋭意検討し、細胞接着性の生分解性材料を用いて所定の気孔率、平均気孔サイズ及び吸水率を有し、かつ気孔間連通孔を有する多孔質体を製造し、この多孔質体に細胞を播種して、多孔質体内における細胞の分布を調べた結果、細胞が当該多孔質体内に均一に分布し、また細胞が多孔質体から脱落することが少なく、多孔質体内に多くの細胞が見られることを見出した。また、ゼラチン、遺伝子組換えゼラチンを用いて製造した当該多孔質体について、ラット頭蓋骨欠損モデルにおける骨再生を評価した結果、当該多孔質構造体では良好な骨再生を示すことを見出した。本発明はこれらの知見に基づいて完成したものである。即ち、本発明によれば、生分解性材料から構成される多孔質体であって以下の特性を有する多孔質体からなる細胞支持体が提供される。a気孔率:81以上99.99以下b平均気孔サイズ:10~400μmc気孔間連通孔を有する、及びd吸水率:1000以上9900以下さらに本発明によれば、生分解性材料から構成される多孔質体であって以下の特性を有する多孔質体からなる骨再生材が提供される。a気孔率:81以上99.99以下b平均気孔サイズ:10~400μmc気孔間連通孔を有する、及びd吸水率:1000以上9900以下好ましくは、生分解性材料のGrandaverageofhydropathicityGRAVY値は、0.3以下-5.0以上である。好ましくは、生分解性材料は、蛋白質、ポリペプチド、ポリ乳酸、ポリグリコール酸、PLGA、キチン、キトサン、セルロース及びヒアルロン酸から選択される少なくとも1種以上である。好ましくは、生分解性材料は、天然又は遺伝子組み換えゼラチン、天然又は遺伝子組み換えフィブロネクチン、あるいは天然又は遺伝子組み換えラミニンである。好ましくは、生分解性材料は架橋されている。好ましくは、架橋はアルデヒド類、縮合剤、又は酵素により施される。好ましくは、生分解性材料が、遺伝子組み換えゼラチンである。好ましくは、遺伝子組み換えゼラチンは、式:A-[Gly-X-Yn]m-B式中、Aは任意のアミノ酸又はアミノ酸配列を示し、Bは任意のアミノ酸又はアミノ酸配列を示し、n個のXはそれぞれ独立にアミノ酸の何れかを示し、n個のYはそれぞれ独立にアミノ酸の何れかを示し、nは3~100の整数を示し、mは2~10の整数を示す。なお、n個のGlyXYはそれぞれ同一でも異なっていてもよい。で示される。好ましくは、遺伝子組み換えゼラチンは、式:GlyAlaPro[Gly-X-Y63]3-Gly式中、63個のXはそれぞれ独立にアミノ酸の何れかを示し、63個のYはそれぞれ独立にアミノ酸の何れかを示す。なお、63個のGlyXYはそれぞれ同一でも異なっていてもよい。で示される。好ましくは、遺伝子組み換えゼラチンは、1配列番号1に記載のアミノ酸配列、又は2配列番号1に記載のアミノ酸配列と80以上の相同性を有し、生分解性を有するアミノ酸配列、を有する。好ましくは、本発明の細胞支持体は、生分解性材料を架橋した後、攪拌し、その後に凍結乾燥することによって製造される。本発明によればさらに、上記した本発明の細胞支持体を含む再生医療材料が提供される。本発明によればさらに、上記した本発明の細胞支持体と移植細胞とを含む、再生医療材料が提供される。好ましくは、本発明の骨再生材は、生分解性材料を架橋した後、攪拌し、その後に凍結乾燥することによって製造される。本発明によればさらに、上記した本発明の骨再生材を含む再生医療材料が提供される。本発明によればさらに、上記した本発明の骨再生材と移植細胞とを含む、再生医療材料が提供される。本発明の細胞支持体は、細胞を均一に分布保持することができ、生体内で分解される素材で構成されている三次元の細胞支持体である。本発明の細胞支持体は、細胞支持体単独でも骨再生能力を有し、骨再生治療に用いることができる。加えて、本発明の過程で得られた三次元構造を付与することによって、一般には骨再生に適していないとされるゼラチン素材であっても、骨再生能力を有する足場構造体として提供することができる。本発明の細胞支持体を再生医療のために使用することにより、ばらつきを抑制した治療効果を達成でき、また予期せぬ副作用の問題も解消することができる。以下、本発明の実施の形態について詳細に説明する。1生分解性材料1-1生分解性材料の種類本発明の細胞支持体は、少なくとも1種以上の生分解性材料で構成される。本発明で用いる生分解性材料は、生体内で分解される限り、その種類は特に限定されない。本発明で用いられる生分解性材料は、GrandaverageofhydropathicityGRAVY値で表される親疎水性指標において、0.3以下-5.0以上であることが好ましく、0.0以下-3.0以上であることがさらに好ましく、上記を満たす親水性ポリペプチドが特に好ましい。GrandaverageofhydropathicityGRAVY値は、GasteigerEHooglandCGattikerADuvaudSWilkinsMRAppelRDBairochAProteinIdentificationandAnalysisToolsontheExPASyServerJohnMWalkerTheProteomicsProtocolsHandbookHumanaPresspp571607及びGasteigerEGattikerAHooglandCIvanyiIAppelRDBairochAExPASytheproteomicsserverforindepthproteinknowledgeandanalysisNucleicAcidsRes3137843788の方法により得ることができる。生分解性材料の具体例としては、蛋白質、ポリペプチド、ポリ乳酸、ポリグリコール酸、PLGA、キチン、キトサン、セルロース、及びヒアルロン酸から選択される少なくとも1種以上の材料を用いることが好ましい。上記の中でも、蛋白質又はポリペプチドが好ましく、特にゼラチン、フィブロネクチン、又はラミニンなどが好ましい。これらの蛋白質は遺伝子組み換え体でも天然体でもよい。遺伝子組み換え蛋白質の具体例としては、遺伝子組み換えゼラチン、プロネクチン、遺伝子組み換えフィブロネクチン、遺伝子組み換えラミニンが挙げられる。上記の中で最も好ましいのは、遺伝子組み換えゼラチンである。遺伝子組み換えゼラチンについては本明細書中において後記する。本発明で用いる生分解性材料は細胞接着性であることが好ましい。細胞接着性が高い素材を用いることによって、細胞の漏出や不均一分布を抑制できると考えられるからである。細胞接着性を定量的に記述することは困難であるが、これら高分子材料には細胞接着性を高める工夫がなされていてもよく、具体的な方法としては1.基材表面に対する細胞接着基質フィブロネクチン、ビトロネクチン、ラミニンや細胞接着配列アミノ酸一文字表記で現わされる、RGD配列、LDV配列、REDV配列、YIGSR配列、PDSGR配列、RYVVLPR配列、LGTIPG配列、RNIAEIIKDI配列、IKVAV配列、LRE配列、DGEA配列、及びHAV配列ペプチドによるコーティング、2.基材表面のアミノ化、カチオン化、3.基材表面のプラズマ処理、コロナ放電による親水性処理といった方法が利用され得る。1-2架橋本発明で用いる生分解性材料は、架橋されているものでもよいし、架橋されていないものでもよいが、架橋されているものが好ましい。架橋方法としては、熱架橋、化学架橋、アルデヒド類例えば、ホルムアルデヒド、グルタルアルデヒドなどによる架橋、縮合剤カルボジイミド、シアナミドなどによる架橋、酵素架橋、光架橋、UV架橋、疎水性相互作用、水素結合、イオン性相互作用など公知の方法を用いることができるが、グルタルアルデヒドを用いて架橋されていることが最も好ましい。光架橋としては、光反応性基を導入した高分子への光照射、あるいは光増感剤の存在化での光照射によるものが挙げられる。光反応性基としては、例えば、シンナミル基、クマリン基、ジチオカルバミル基、キサンテン色素、カンファキノンが挙げられる。酵素による架橋を行う場合、酵素としては、生分解性材料間の架橋作用を有するものであれば特に限定されないが、好ましくはトランスグルタミナーゼおよびラッカーゼ、最も好ましくはトランスグルタミナーゼを用いて架橋を行うことができる。トランスグルタミナーゼで酵素架橋するタンパク質の具体例としては、リジン残基およびグルタミン残基を有するタンパク質であれば特に制限されない。トランスグルタミナーゼは、哺乳類由来のものであっても、微生物由来のものであってもよく、具体的には、味の素株製アクティバシリーズ、試薬として発売されている哺乳類由来のトランスグルタミナーゼ、例えば、オリエンタル酵母工業株製、UpstateUSAInc製、BiodesignInternational製などのモルモット肝臓由来トランスグルタミナーゼ、ヤギ由来トランスグルタミナーゼ、ウサギ由来トランスグルタミナーゼなど、ヒト由来の血液凝固因子FactorXIIIa、HaematologicTechnologies,Inc社などが挙げられる。生分解性材料の架橋には、生分解性材料の溶液と架橋剤を混合する過程とそれらの均一溶液の反応する過程の2つの過程を有する。本発明において生分解性材料を架橋剤で処理する際の混合温度は、溶液を均一に攪拌できる限り特に限定されないが、好ましくは0°C~40°Cであり、より好ましくは0°C~30°Cであり、より好ましくは3°C~25°Cであり、より好ましくは3°C~15°Cであり、さらに好ましくは3°C~10°Cであり、特に好ましくは3°C~7°Cである。生分解性材料と架橋剤を攪拌した後は温度を上昇させることができる。反応温度としては架橋が進行する限りは特に限定はないが、生分解性材料の変性や分解を考慮すると実質的には0°C~60°Cであり、より好ましくは0°C~40°Cであり、より好ましくは3°C~25°Cであり、より好ましくは3°Cから15°Cであり、さらに好ましくは3°C~10°Cであり、特に好ましくは3°C~7°Cである。1-3遺伝子組み換えゼラチン本発明で用いることができる遺伝子組み換えゼラチンは、コラーゲンに特徴的なGlyXYで示される配列X及びYはそれぞれ独立にアミノ酸の何れかを示すの繰り返しを有するものが好ましい複数個のGlyXYはそれぞれ同一でも異なっていてもよい。好ましくは、細胞接着シグナルを一分子中に2配列以上含まれている。本発明で用いる遺伝子組み換えゼラチンとしては、コラーゲンの部分アミノ酸配列に由来するアミノ酸配列を有する遺伝子組み換えゼラチンを用いることができ、例えばEP1014176A2、US6992172、WO200485473、WO2008103041等に記載のものを用いることができるが、これらに限定されるものではない。本発明で用いる遺伝子組み換えゼラチンとして好ましいものは、以下の態様の遺伝子組み換えゼラチンである。本発明で用いる遺伝子組み換えゼラチンは天然のゼラチン本来の性能から、生体適合性に優れ、且つ天然由来ではないことでBSEなどの懸念がなく、非感染性に優れている。また、本発明で用いる遺伝子組み換えゼラチンは天然のものに比して均一であり、配列が決定されているので、強度、分解性においても後述の架橋等によってブレを少なく精密に設計することが可能である。遺伝子組み換えゼラチンの分子量は2KDa以上100KDa以下であることが好ましい。より好ましくは25KDa以上95KDa以下である。より好ましくは5KDa以上90KDa以下である。最も好ましくは、10KDa以上90KDa以下である。遺伝子組み換えゼラチンは、コラーゲンに特徴的なGly-X-Yで示される配列の繰り返しを有する。ここで、複数個のGlyXYはそれぞれ同一でも異なっていてもよい。Gly-X-Yにおいて、Glyはグリシン、X及びYは、任意のアミノ酸好ましくは、グリシン以外の任意のアミノ酸を表す。コラーゲンに特徴的なGXY配列とは、ゼラチンコラーゲンのアミノ酸組成および配列における、他のタンパク質と比較して非常に特異的な部分構造である。この部分においてはグリシンが全体の約3分の1を占め、アミノ酸配列では3個に1個の繰り返しとなっている。グリシンは最も簡単なアミノ酸であり、分子鎖の配置への束縛も少なく、ゲル化に際してのヘリックス構造の再生に大きく寄与している。X,Yであらわされるアミノ酸はイミノ酸プロリン、オキシプロリンが多く含まれ、全体の10~45を占めることが好ましい。好ましくはその配列の80以上、更に好ましくは95以上、最も好ましくは99以上のアミノ酸がGXYの繰り返し構造であることが好ましい。一般的なゼラチンは極性アミノ酸のうち、電荷を持つものと無電荷のものが1:1で存在する。ここで、極性アミノ酸とは具体的にシステイン、アスパラギン酸、グルタミン酸、ヒスチジン、リジン、アスパラギン、グルタミン、セリン、スレオニン、チロシン、アルギニンを指し、このうち極性無電荷アミノ酸とはシステイン、アスパラギン、グルタミン、セリン、スレオニン、チロシンを指す。本発明で用いる遺伝子組み換えゼラチンにおいては、構成する全アミノ酸のうち、極性アミノ酸の割合が10~40であり、好ましくは20~30である。且つ該極性アミノ酸中の無電荷アミノ酸の割合が5以上20未満、好ましくは10未満であることが好ましい。さらに、セリン、スレオニン、アスパラギン、チロシン、システインのうちいずれか1アミノ酸、好ましくは2以上のアミノ酸を配列上に含まないことが好ましい。一般にポリペプチドにおいて、細胞接着シグナルとして働く最小アミノ酸配列が知られている例えば、株式会社永井出版発行病態生理Vol.9、No.71990年527頁。本発明で用いる遺伝子組み換えゼラチンは、これらの細胞接着シグナルを一分子中に2以上有することが好ましい。具体的な配列としては、接着する細胞の種類が多いという点で、アミノ酸一文字表記で現わされる、RGD配列、LDV配列、REDV配列、YIGSR配列、PDSGR配列、RYVVLPR配列、LGTIPG配列、RNIAEIIKDI配列、IKVAV配列、LRE配列、DGEA配列、及びHAV配列の配列が好ましく、さらに好ましくはRGD配列、YIGSR配列、PDSGR配列、LGTIPG配列、IKVAV配列及びHAV配列、特に好ましくはRGD配列である。RGD配列のうち、好ましくはERGD配列である。本発明で用いる遺伝子組み換えゼラチンにおけるRGD配列の配置として、RGD間のアミノ酸数が0~100の間、好ましくは25~60の間で均一でないことが好ましい。この最小アミノ酸配列の含有量は、細胞接着増殖性の観点から、タンパク質1分子中3~50個が好ましく、さらに好ましくは4~30個、特に好ましくは5~20個である。最も好ましくは12個である。本発明で用いる遺伝子組み換えゼラチンにおいて、アミノ酸総数に対するRGDモチーフの割合は少なくとも0.4であることが好ましく、遺伝子組み換えゼラチンが350以上のアミノ酸を含む場合に、350のアミノ酸の各ストレッチが少なくとも1つのRGDモチーフを含むことが好ましい。アミノ酸総数に対するRGDモチーフの割合は、更に好ましくは少なくとも0.6であり、更に好ましくは少なくとも0.8であり、更に好ましくは少なくとも1.0であり、更に好ましくは少なくとも1.2であり、最も好ましくは少なくとも1.5である。遺伝子組み換えゼラチン内のRGDモチーフの数は、250のアミノ酸あたり、好ましくは少なくとも4、更に好ましくは6、更に好ましくは8、更に好ましくは12以上16以下である。RGDモチーフの0.4という割合は、250のアミノ酸あたり、少なくとも1つのRGD配列に対応する。RGDモチーフの数は整数であるので、0.4の特徴を満たすには、251のアミノ酸からなるゼラチンは、少なくとも2つのRGD配列を含まなければならない。好ましくは、本発明の遺伝子組み換えゼラチンは、250のアミノ酸あたり、少なくとも2つのRGD配列を含み、より好ましくは250のアミノ酸あたり、少なくとも3つのRGD配列を含み、さらに好ましくは250のアミノ酸あたり、少なくとも4つのRGD配列を含む。本発明の遺伝子組み換えゼラチンのさらなる態様としては、少なくとも4つのRGDモチーフ、好ましくは6つ、より好ましくは8つ、さらに好ましくは12以上16以下のRGDモチーフを含む。また、遺伝子組み換えゼラチンは部分的に加水分解されていてもよい。本発明で用いる遺伝子組み換えゼラチンは、A[Gly-X-Yn]mBの繰り返し構造を有することが好ましい。mとして好ましくは2~10、好ましくは3~5である。nは3~100が好ましく、15~70がさらに好ましく、50~65が最も好ましい。繰り返し単位には天然に存在するコラーゲンの配列単位を複数結合することが好ましい。ここで言う天然に存在するコラーゲンとは天然に存在するものであればいずれであっても構わないが、好ましくはI型、II型、III型、IV型、およびV型である。より好ましくは、I型、II型、III型である。別の形態によると、該コラーゲンの由来は好ましくは、ヒト、ウシ、ブタ、マウス、ラットである。より好ましくはヒトである。本発明で用いる遺伝子組み換えゼラチンの等電点は、好ましくは5~10であり、より好ましくは6~10であり、さらに好ましくは7~95である。好ましくは、遺伝子組み換えゼラチンは脱アミン化されていない。好ましくは、遺伝子組み換えゼラチンはテロペプタイドを有さない。好ましくは、遺伝子組み換えゼラチンは天然コラーゲンをコードする核酸により調製された実質的に純粋なコラーゲン用材料である。本発明で用いる遺伝子組み換えゼラチンとして特に好ましくは、1配列番号1に記載のアミノ酸配列;又は2配列番号1に記載のアミノ酸配列と80以上さらに好ましくは90以上、最も好ましくは95以上の相同性を有し、生分解性を有するアミノ酸配列;を有する遺伝子組み換えゼラチンである。本発明で用いる遺伝子組み換えゼラチンは、当業者に公知の遺伝子組み換え技術によって製造することができ、例えばEP1014176A2、US6992172、WO200485473、WO2008103041等に記載の方法に準じて製造することができる。具体的には、所定の遺伝子組み換えゼラチンのアミノ酸配列をコードする遺伝子を取得し、これを発現ベクターに組み込んで、組み換え発現ベクターを作製し、これを適当な宿主に導入して形質転換体を作製する。得られた形質転換体を適当な培地で培養することにより、遺伝子組み換えゼラチンが産生されるので、培養物から産生された遺伝子組み換えゼラチンを回収することにより、本発明で用いる遺伝子組み換えゼラチンを調製することができる。2多孔質体本発明の細胞支持体は、生分解性材料から構成される多孔質体であって以下の特性を有する多孔質体からなるものである。a気孔率本発明の細胞支持体多孔質体の気孔率は、嵩密度ρと真密度ρcより、気孔率P1-ρρcを求める。嵩密度ρは、乾燥重量と体積から算出し、真密度ρcは、ハバード型形の比重瓶法により求めることができる。本発明の細胞支持体多孔質体の気孔率は、81以上99.99以下であり、好ましくは95.01以上99.9以下である。b平均気孔サイズ本発明の細胞支持体多孔質体の平均気孔サイズは、内部断面構造を走査型電子顕微鏡で観察することで求められる。本発明の細胞支持体多孔質体の平均気孔サイズは10~400μmであり、好ましくは50~300μmであり、より好ましくは70~200μmである。c気孔間連通孔本発明の細胞支持体においては、気孔間連通孔が存在している。気孔間連通孔が存在することによって、スポンジ外部からスポンジ深部に至るまで、気孔が連なることにより、スポンジへ播種した細胞が、スポンジ内部へと分散拡散可能となる。また、気孔間連通孔は、上記機能を発揮するため、10μm以上であることが好ましい。d吸水率本発明の細胞支持体多孔質体の吸水率は、乾燥重量W0と、超純水を25°Cで5分間自然に吸水させ、プラスチックシャーレ上にて余分な水を十分に除いた後の水膨潤時の重量W1を用いて、W1÷W0×100により算出することができる。本発明の細胞支持体多孔質体の吸水率は、1000以上9900以下であり、好ましくは2000以上5000以下である。生分解性材料から構成される多孔質体は、公知の方法を用いて製造することができる。例えば、上記した生分解性材料を、上記した方法で架橋した後、ホモジナイザーを用いて攪拌し、その後に凍結乾燥することにより、生分解性材料から構成される多孔質体を製造することができる。3細胞支持体の用途本発明の細胞支持体は、骨再生治療用の足場基材、治療剤として用いることが出来る。本発明の細胞支持体は単独で骨再生治療剤として用いることができる。骨再生、骨新生が必要な治療である限り、疾患は限定されるものではない。加えて、本発明の細胞支持体は、移植細胞や骨誘導薬剤と併用することによっても骨再生治療剤として用いることが出来る。骨誘導薬剤としては、例えばBMP骨形成因子やbFGF塩基性線維芽細胞増殖因子が挙げられるが特に限定はされない。また、本発明の細胞支持体は、再生医療を目的として生体に細胞を移植するための足場として使用することができる。即ち、本発明の細胞支持体は、再生医療材料として使用することができる。本発明の細胞支持体は、再生医療材料として使用する場合には、本発明の細胞支持体に細胞を播種し、細胞を内部に含む細胞支持体を、生体に移植することができる。即ち、移植細胞を含む本発明の細胞支持体を、再生医療材料として使用することができる。但し、本発明の細胞支持体の用途は、再生医療に限定されるわけではなく、移植を目的としない細胞の培養に用いることもできる。本発明の細胞支持体に支持される細胞は、目的に応じて適宜選択することができ、その種類は特に限定されない。好ましくは、動物細胞を使用することができ、特にヒト由来細胞を使用することができる。動物細胞特に、ヒト由来細胞の種類は、万能細胞、体性幹細胞、前駆細胞、又は成熟細胞の何れでもよい。万能細胞としては、例えば、ES細胞、GS細胞、又はiPS細胞を使用することができる。体性幹細胞としては、例えば、間葉系幹細胞MSC、造血幹細胞、又は神経幹細胞を使用することができる。前駆細胞及び成熟細胞としては、例えば、皮膚、真皮、表皮、筋肉、心筋、神経、骨、軟骨、内皮、脳、上皮、心臓、腎臓、肝臓、膵臓、脾臓、口腔内、角膜、又は毛に由来する細胞を使用することができる。このうち、最も好ましい細胞の一つとして軟骨細胞が挙げられる。ヒト由来細胞としては、例えば、ES細胞、iPS細胞、MSC、軟骨細胞、骨芽細胞、骨芽前駆細胞、間充織細胞、筋芽細胞、心筋細胞、神経細胞、肝細胞、ベータ細胞、線維芽細胞、角膜内皮細胞、血管内皮細胞、角膜上皮細胞、又は造血幹細胞を使用することができる。治療用途においては、宿主由来の細胞を活用するのでも、外から移植細胞を用いるのでも構わない。また、細胞の由来は、自家細胞又は他家細胞の何れでも構わない。なお、本発明の細胞支持体への細胞の播種が必要な場合は、常法により行えばよく、適当な容器内に置いた本発明の細胞支持体に対して、細胞を、例えば細胞懸濁液として播種すればよい。以下の実施例により本発明をさらに具体的に説明するが、本発明は実施例によって限定されるものではない。実施例1:遺伝子組み換えゼラチン遺伝子組み換えゼラチンリコンビナントゼラチンとして以下記載のCBE3を用意したWO2008103041に記載。CBE3分子量:516kD構造:GAP633Gアミノ酸数:571個RGD配列:12個イミノ酸含量:33ほぼ100のアミノ酸がGXYの繰り返し構造である。CBE3のアミノ酸配列には、セリン、スレオニン、アスパラギン、チロシン及びシステインは含まれていない。CBE3はERGD配列を有している。等電点:934アミノ酸配列配列表の配列番号1WO2008/103041号公報の配列番号3と同じ。但し末尾のXはPに修正GAP3G実施例2:遺伝子組み換えゼラチンのGRAVYの計算結果遺伝子組み換えゼラチンCBE3について、蛋白質ポリペプチドの親疎水性の指標であるGrandaverageofhydropathicityGRAVY値を求めた。GRAVY値については、GasteigerEHooglandCGattikerADuvaudSWilkinsMRAppelRDBairochAProteinIdentificationandAnalysisToolsontheExPASyServerJohnMWalkerTheProteomicsProtocolsHandbookHumanaPresspp571607及びGasteigerEGattikerAHooglandCIvanyiIAppelRDBairochAExPASytheproteomicsserverforindepthproteinknowledgeandanalysisNucleicAcidsRes3137843788の方法により得た。その結果、遺伝子組み換えゼラチンCBE3のGRAVY値は-0.682であり、親水性が高い素材であることが明らかになった。実施例3:マウス皮下での遺伝子組み換えゼラチンの分解遺伝子組み換えゼラチンCBE3について生体内での生分解性を証明するために、マウス皮下での分解性を調べた。遺伝子組み換えゼラチンCBE3について、グルタルアルデヒドGAを用いて架橋を施し、遺伝子組み換えゼラチンCBE3ハイドロゲル5CBE3を0.1GA架橋したゲル、及び3CBE3を0.075GA架橋したゲルを作製した。得られたハイドロゲルをDDYマウスオスの8週令の背部皮下へ埋殖し、経時変化を病理切片、及び残存ゲル量を測定した。残存ゲル量については、試験日数期間の経過後にゲルを取り出し、凍結乾燥し、残存したゲルを乾燥重量として、初期埋め込み時の乾燥重量と比較した。結果を図1に示す。図1に示す通り、5CBE3を0.1GA架橋したゲルの残存量は、埋め込み時に対して、5日で55、14日で9となり、生体内で徐々に分解していくことが明らかになった。3CBE3を0.075GA架橋したゲルについても、その残存量は、5.2日で41、14.2日で7となり、生体内で徐々に分解していくことが明らかになった。また、代表的な病理切片の画像ヘマトキシリンエオジン染色を図2に記す。遺伝子組み換えゼラチンCBE3ゲルが徐々に分解して、小さくなっている様子が分かる。上記の結果から、遺伝子組み換えゼラチンを素材として作製される基材は、生分解性を有することが実証された。実施例4:遺伝子組み換えゼラチンスポンジの作製遺伝子組み換えゼラチンCBE3を用いて、スポンジ多孔質体を作製した。本実施例では、10CBE3のものと5CBE3のものを作製している。以下の組成で溶液を調整し、グルタルアルデヒドを添加後、4°CにてホモジナイザーAM11、NIHONSEIKI製で17,000rpmで4分間攪拌し、そのまま-80°Cで3時間急冷する。組成:5スポンジ10mL分CBE3:500mg、超純水:9424μL、1NHCl:76μL、3グルタルアルデヒド500μL10スポンジ10mL分CBE3:1g、超純水:9348μL、1NHCl:152μL、3グルタルアルデヒド500μLその後、4°Cで16時間静置して得られた物を、十分量の37°Cの0.2Mグリシン溶液中で4時間、振盪する。その後、10Lの超純水で洗浄を8回計4時間繰り返してから、-80°Cで2時間凍結させる。その後、凍結乾燥機にて4日間凍結乾燥を行い、遺伝子組み換えゼラチンスポンジ多孔質体を得た。実施例5:遺伝子組み換えゼラチンスポンジの気孔率の測定実施例4で得られた遺伝子組み換えゼラチンスポンジについて、気孔率を測定した。測定に当たっては、嵩密度ρと真密度ρcを測定し、気孔率P=1-ρρcを求めた。遺伝子組み換えゼラチンスポンジの嵩密度ρは、乾燥重量と体積から算出した。真密度ρcは、ハバード型形の比重瓶法により求めた。サンプル数N=4の結果として、5スポンジでは嵩密度が0.03gcm3、真密度が1.01gcm3、気孔率97CV値は7を達成していることが明らかになった。また、10スポンジでは嵩密度が0.05gcm3、真密度が1.23gcm3、気孔率96CV値は8を達成していることが明らかになった。実施例6:遺伝子組み換えゼラチンスポンジの吸水率測定実施例4で得られた遺伝子組み換えゼラチンスポンジについて、吸水率を測定した。吸水率は、乾燥重量W0と、超純水を25°Cで5分間自然に吸水させ、プラスチックシャーレ上にて余分な水を十分に除いた後の水膨潤時の重量W1を用いて、W1÷W0×100により算出した。その結果、5スポンジのサンプル数N5の平均として、吸水率は3640であり、高い吸水率を有していることが明らかになった。実施例7:遺伝子組み換えゼラチンスポンジのSEM画像、及び平均気孔サイズの測定実施例4で得られた遺伝子組み換えゼラチンスポンジについて、内部断面構造を走査型電子顕微鏡で観察した。代表的なSEM画像を図35スポンジの断面、及び図410スポンジの断面に示す。これにより、得られた遺伝子組み換えゼラチンスポンジの多孔質内部構造が明らかになった。内部気孔サイズは、10スポンジが106.0±7.7μm直径の個数平均としてであり、5スポンジが114.8±15.8μmであった。また、図3及び図4からも分かるように、気孔間には気孔間連通孔が存在しており、これによって、スポンジ外部からスポンジ深部に至るまで、気孔が連なっていることが分かる。また、この気孔間連通孔は、10μm以上のサイズであることが確認できることから、細胞が概連通孔を通過可能であることも分かる。上記の結果から、スポンジへ播種した細胞が、スポンジ内部へと分散拡散可能であることが分かる。実施例8:コラーゲンスポンジ及び遺伝子組み換えゼラチンスポンジ内における細胞の分布の比較実施例4で得られた本発明の遺伝子組み換えゼラチンスポンジ5、10と、比較用のコラーゲンスポンジ新田ゼラチン:35mmディッシュ用について、同じ形状直径8mm、高さ5mmの円柱状に成型し、24穴培養プレート内にて細胞をスポンジ上部より播種した。播種した細胞は、ヒト間葉系幹細胞hMSCで、800万cellsmLの濃度で培地タカラバイオ:MSCGMCDTMBulletKitTMに懸濁し、その懸濁液250μLをスポンジへ播種した。2時間静置後にプレート底面へ培地を添加し、Day1、Day4まで培養した。その結果、コラーゲンスポンジでは、播種した細胞がスポンジを通過して底面へと落ちてしまうものが多く存在したのに比べて、遺伝子組み換えゼラチンスポンジでは、底面へ脱落する細胞が少なかった。また、細胞を播種したスポンジについて、PBSで洗浄後、10ホルムアルデヒドにて固定、パラフィン包埋し、組織切片を作成した。染色は、HE染色を行い、スポンジ内部における細胞の分布を視覚化した。図5、6、7、8。その結果、比較用のコラーゲンスポンジでは細胞の分布が不均一になっているのに対し、本発明の遺伝子組み換えゼラチンスポンジでは、細胞がスポンジ内に均一に分布し、また細胞がスポンジから脱落することが少なく、スポンジ内に多くの細胞が見られることが判明した。尚、それぞれ、切片写真を区分けし、各区画に存在する細胞数をカウント後、各区画の占有面積スポンジ内で除することによって、単位面積当たりの細胞数を求めた。求めた単位面積当たりの細胞数について、バラツキをCV値にて、図5,6,7,8に示した。このバラツキのCV値によって、分布が均一であるかどうかが分かる。コラーゲンスポンジでは、Day1:45、Day4:56となり、非常に分布が不均一であるのに比べて、遺伝子組換えゼラチンスポンジでは、Day1:29、Day4:30と分布が均一であることが定量的にも分かる。また、コラーゲンスポンジでは、スポンジ自体の形状が培養とともに歪んでくることも欠点として確認された一方で、遺伝子組換えゼラチンスポンジでは、スポンジ自体の形状がしっかりと維持されていることも確認できた。実施例9:アテロコラーゲンスポンジハニカム及び遺伝子組み換えゼラチンスポンジ内における細胞の分布の比較実施例4で得られた本発明の遺伝子組み換えゼラチンスポンジ5、10と、比較用のアテロコラーゲンハニカムスポンジ高研、について、同じ形状3mm×2mm×2mmの直方体に成型し、24穴培養プレート内にて細胞をスポンジ上部より播種した。播種した細胞は、ヒト間葉系幹細胞hMSCで、800万cellsmLの濃度で培地タカラバイオ:MSCGMCDTMBulletKitTMに懸濁し、その懸濁液12μLをスポンジへ播種した。2時間静置後にプレート底面へ培地を添加し、Day1、Day4まで培養した。その結果、比較用のアテロコラーゲンハニカムスポンジでは、播種した細胞がスポンジを通過して底面へと落ちてしまうものが多く存在したのに比べて、遺伝子組み換えゼラチンスポンジでは底面へ脱落する細胞が少なかった。また、細胞を播種したスポンジについて、PBSで洗浄後、10ホルムアルデヒドにて固定、パラフィン包埋し、組織切片を作成した。染色は、HE染色を行い、スポンジ内部における細胞の分布を視覚化した図9,10,11,12。その結果、比較用のアテロコラーゲンハニカムスポンジでは、細胞の分布が不均一になっているのに対し、本発明の遺伝子組み換えゼラチンスポンジでは、細胞がスポンジ内に均一に分布し、また細胞がスポンジから脱落することが少なく、スポンジ内に多くの細胞が見られることが判明した。尚、それぞれ、切片写真を区分けし、各区画に存在する細胞数をカウント後、各区画の占有面積スポンジ内で除することによって、単位面積当たりの細胞数を求めた。求めた単位面積当たりの細胞数について、バラツキをCV値にて、図9,10,11,12に示した。このバラツキのCV値によって、分布が均一であるかどうかが分かる。アテロコラーゲンハニカムスポンジでは、Day1:66、Day4:79となり、非常に分布が不均一であるのに比べて、遺伝子組換えゼラチンスポンジでは、Day1:27、Day4:18と分布が均一であることが定量的にも分かる。比較例1:コラーゲンゲル包埋培養法比較用本発明の遺伝子組み換えゼラチンスポンジ内での細胞分布細胞培養との比較として、コラーゲンゲル包埋培養を実施した。形状としては、実施例8と同じ円柱状の形態にて実施した。0.5アテロコラーゲン溶液高研:IPC-50、AteloCellと、培地タカラバイオ:MSCGMCDTMBulletKitTMを1:1の割合で、4°C氷上にて混合した混合培地を作成した。混合培地に、ヒト間葉系幹細胞hMSCを800万cellsmL濃度で懸濁し、懸濁液500μLを48穴プレートに播種した。37°C、5CO2で30分静置することでゲル化させ、その後、十分量の培地を加え、4日間培養Day4した。培養の際、培地は毎日新しい培地に交換した。Day4のサンプルについて、ホルマリン固定、パラフィン包埋、切片を作成した。染色は、HE染色を行い、内部の細胞分布を視覚化した図13,14。尚、それぞれ、切片写真を区分けし、各区画に存在する細胞数をカウント後、各区画の占有面積スポンジ内で除することによって、単位面積当たりの細胞数を求めた。求めた単位面積当たりの細胞数について、バラツキをCV値にて、図13,14に示した。このバラツキのCV値によって、分布が均一であるかどうかが分かる。アテロコラーゲンゲル包埋培養では、Day1:45、Day4:51となり、非常に分布が不均一であった。結果、アテロコラーゲンゲル中で培養した細胞は、不均一な状態になることが示され、従来技術であるコラーゲンゲル包埋培養において問題とされているゲル中での細胞分布の不均一さ、が再現された。また、コラーゲンゲル包埋では、ゲル自体の形状が培養とともに歪んでくることも欠点として確認された。比較例2:コラーゲン上での細胞播種細胞培養比較用本発明の遺伝子組み換えゼラチンスポンジ内での細胞分布細胞培養との比較として、コラーゲンゲル上への細胞播種細胞培養を実施した。形状としては、実施例8と同じ円柱状の形態にて実施した。0.5アテロコラーゲン溶液高研:IPC-50、AteloCellと、培地タカラバイオ:MSCGMCDTMBulletKitTMを4°C氷上で混合した混合培地を作成し、混合培地500μLを48穴プレートに添加した。37°C、5CO2で30分静置することによって、コラーゲンゲルを得た。このコラーゲンゲルの上に、800万cellsmLのhMSC細胞懸濁液を500μL播種し、4日間培養Day4した。培養の際、培地は毎日新しい培地に交換した。Day4のサンプルについて、ホルマリン固定、パラフィン包埋、切片を作成した。染色は、HE染色を行い、内部の細胞分布を視覚化した図15,16。その結果、アテロコラーゲンゲル上へ播種培養した細胞は、ゲル上からゲル内へ移動することはできず、ゲル中へ均一な分布を見せることはなかった。実施例10:細胞接着性試験遺伝子組み換えゼラチンスポンジ中で、細胞が均一に分布可能であることの要因の一つとして、遺伝子組み換えゼラチンが細胞接着性を有することが考えられる。遺伝子組み換えゼラチンの細胞接着性が高いことによって、細胞の漏出や不均一分布を抑制できる可能性があるためである。そこで、遺伝子組み換えゼラチンの細胞接着性を調べるために、遺伝子組み換えゼラチンCBE3の細胞への接着性試験を行った。使用した細胞は、HUVEC正常ヒト臍帯静脈内皮細胞:タカラバイオ社を用いた。HUVECは一般に、各種基材への細胞接着が悪い細胞として知られている。HUVECの培養には、内皮細胞基本培地2無血清EBMTM2及び内皮細胞培地キット22FBSEGMTM2BulletKitTMを用いたタカラバイオ社。継代時、及び細胞剥離時には、EDTA含有025trypsin溶液を使用した。T75フラスコにて十分量まで増殖させたHUVECをフラスコ底面から剥離し、遠心によって上清を除去した。その後、上記内皮細胞培地キット2入りの内皮細胞基本培地2で洗浄し、再度遠心によって上清を除去、内皮細胞培地キット2を含まない内皮細胞基本培地2に01BSAを加えた溶液を添加懸濁し、細胞計数盤にて生細胞の数をカウント、最終細胞濃度を50万cellsmLに調整した。一方、細胞接着性の比較試験のため、各種蛋白質遺伝子組み換えゼラチンCBE3、フィブロネクチン、Fibrogen社製コラーゲン以後Fibrogenと記載する、豚皮由来ゼラチン以後、PSKと記載する、牛骨由来ゼラチン以後、G1917Pと記載するでコーティングしたプレートの準備を行った。PBSリン酸緩衝液に1mgmL濃度で遺伝子組み換えゼラチンCBE3を溶解させ、遺伝子組み換えゼラチンCBE3溶解液を作製した。PBSリン酸緩衝液に1mgmL濃度でフィブロネクチンを溶解させ、フィブロネクチン溶解液を作製した。PBSリン酸緩衝液に1mgmL濃度でFibrogenを溶解させ、Fibrogen溶解液を作製した。PBSリン酸緩衝液に1mgmL濃度でPSKを溶解させ、PSK溶解液を作製した。PBSリン酸緩衝液に1mgmL濃度でG1917Pを溶解させ、G1917P溶解液を作製した。上記、溶解液は随時PBSで希釈しプレート添加に使用した。プレートには、Nontreated96穴プレートIWAKIを使用した。Nontreated96穴プレートに蛋白質濃度が002010220μgwellとなるように、PBSで上記溶解液を希釈した溶液を50μLwellで添加した。その後、37°Cで2時間インキュベート、溶液を除去した後に全てのwellに100μLのPBSを添加洗浄し、PBSを除去洗浄工程した。該洗浄工程を3回行った。これによって、コーティング蛋白質及びコーティング濃度の異なるコーティングプレートを得た。本コーティングプレートに、上記で用意したHUVEC懸濁液50万cellsmLを100μLずつ播種した。37°Cで1時間インキュベートした後、培地を吸引除去、100μLのPBSを添加して洗浄、PBSは吸引により除去したPBS洗浄。本PBS洗浄を3回行い、PBSを除去した状態のプレートを得た。得られたプレート上の細胞数定量には、DNAassayを使用した。得られたプレートのwellにそれぞれ100μLのSDS溶液20mgのSDSを100mLの1×SSC溶液に溶解したもの:1×SSC溶液とは17999gのNaClと8823gのNa3Citrateを2Lの超純粋に溶解したものであるを加え、37°Cで1時間静置する。得られた個々の溶液全量をそれぞれ96穴ブラックプレートNontreatedへ移し、100μLのHoechst溶液Hoechst33258を20μLと1×SSC溶液20mLを混合したものを全てのwellに添加し、プレートリーダーにて蛍光強度を測定した。用いたプレートリーダーはGeminiEMモレキュラーデバイス社、励起波長355nm、測定波長460nmで蛍光強度を測定した。検量線は、細胞数を調整したHUVEC細胞の懸濁液で作成した。得られた細胞接着性試験DNAassayの結果を図17及び図18に示した。また、遺伝子組み換えゼラチンでコーティングしたプレートへの細胞接着の様子を図19に写真として示した。上記の結果から、遺伝子組み換えゼラチンが良好な細胞接着性を有していることが示された。実施例11:遺伝子組換えゼラチンパウダーの作製遺伝子組み換えゼラチンCBE3を用いて、パウダー粒子形状を作製した。本実施例では、7.5CBE3のものを作製している。以下の組成で溶液を調整し、グルタルアルデヒドを添加後、25°Cにて十分に攪拌した後、そのまま4°Cで16時間架橋反応を行う。組成:7.5スポンジ10mL分CBE3:750mg、超純水:8893.6μL、1NHCl:106.4μL、3グルタルアルデヒド1000μL4°Cで16時間静置反応して得られた物を、十分量の37°Cの0.2Mグリシン溶液中で4時間、振盪する。その後、10Lの超純水で洗浄を8回計4時間繰り返してから、-80°Cで2時間凍結させる。その後、凍結乾燥機にて4日間凍結乾燥を行い、得られた乾燥体をニューパワーミル大阪ケミカル、ニューパワーミルPM-2005で粉砕した。得られた粉砕物について、ステンレス製ふるいでサイズ分けし、500~710μm大のパウダー粒子形状を得た。実施例12:ラット頭蓋骨欠損モデルにおける骨再生評価骨再生能を評価する動物実験モデルとしてラット頭蓋骨欠損モデルを用いたTissueEng1350112。ラット頭蓋骨欠損モデルは、一般的に骨補填剤の評価に用いられている。Sprague-DawleyラットSDラット、雄、1012週齢を麻酔し、右側頭頂骨にドリルOsadaSuccess40長田電気工業にて円形の欠損部φ5mmを作成した図20。骨再生に影響する欠損部の骨片や血液を生理食塩水にて洗浄、除去。作製された欠損部へ、骨再生評価を行いたいサンプルを欠損部へ埋殖し、移植サンプルが欠損部から飛び散らないようにコラーゲン膜BioGideで蓋をした後、患部皮膚を縫合した。所定期間後2週ラットを開腹放血させラットをサクリファイし、欠損させた患部の肉眼観察を実施した後、該頭部をホルマリン固定脱灰してパラフィンに包埋。パラフィン包埋ブロックを薄切し、得られた切片をヘマトキシリン-エオシンの作製動物由来天然ゼラチンAPATを用いて、天然ゼラチンスポンジ多孔質体を作製した。本実施例では、5濃度のものを作製している。以下の組成で溶液を調整し、グルタルアルデヒドを添加後、4°CにてホモジナイザーAM11、NIHONSEIKI製で17,000rpmで4分間攪拌し、そのまま-80°Cで3時間急冷する。組成:5スポンジ10mL分APAT:500mg、超純水:9424μL、1NHCl:76μL、3グルタルアルデヒド500μLその後、4°Cで16時間静置して得られた物を、十分量の37°Cの0.2Mグリシン溶液中で4時間、振盪する。その後、10Lの超純水で洗浄を8回計4時間繰り返してから、-80°Cで2時間凍結させる。その後、凍結乾燥機にて4日間凍結乾燥を行い、天然ゼラチンスポンジ多孔質体を得た。実施例15:天然ゼラチンスポンジの骨再生率をラット頭蓋骨欠損部で評価実施例14にて作製した天然ゼラチンスポンジ5を実施例12で作製したラット頭蓋骨欠損部分に移植した。移植物が飛散しないように、コラーゲン製膜BioGide、Osteohealth社を設置した。また、患部に何も適用しない群をコントロール群とした。結果、天然ゼラチンスポンジを移植した群では、骨再生量は819960μm2、再生骨割合は590に上り、極めて骨再生が早くに誘導されていることが分かった。これにより、これまで一般には骨再生に適さないと考えられていた素材、天然ゼラチンであっても、本発明の構造を付与することによって、骨再生効果を著しく上昇させることが可能であることが明らかとなった。図21に、骨再生量、及び骨再生割合のデータを表にまとめた。図23に、天然ゼラチンスポンジを移植した群の代表的な病理写真を示した。"