実質的に保持された免疫原特性を有する死細胞の安定組成物であって、死細胞、少なくとも1つの細胞内凍結保存剤、少なくとも1つの細胞外凍結保存剤、任意にアジュバント及び賦形剤を含む、前記組成物。細胞内凍結保存剤が炭水化物である、請求項1に記載の組成物。炭水化物がトレハロース又はスクロースである、請求項2に記載の組成物。炭水化物が、1~10w/vの範囲の濃度である、請求項2に記載の組成物。細胞外凍結保存剤が両親媒性ポリマーである、請求項1に記載の組成物。両親媒性ポリマーが、ポビドンPVP、ヒドロキシエチルデンプンHES、ポリソルベート又はそれらの混合物から選択される、請求項5に記載の組成物。両親媒性ポリマーが、0.1~5w/vの範囲の濃度である、請求項5に記載の組成物。両親媒性ポリマーが、30~50kDaの範囲の分子量を有する、請求項5に記載の組成物。アジュバントが、油、アルミニウム塩、及びビロソーム、生きた全生物体若しくは死んだ全生物体、微生物の抽出物、並びにそれらの組み合せから選択される、請求項1に記載の組成物。アジュバントがマイコバクテリウムwMycobacteriumwMwである、請求項1又は9に記載の組成物。a.細胞を殺す工程、b.工程aから得た組成物を細胞内凍結保存剤で処理する工程、c.工程bから得た組成物を細胞外凍結保存剤で処理する工程、d.凍結乾燥前に、工程cから得た組成物を急速凍結し、配合物を凍結する工程、e.工程dから得た組成物を凍結乾燥する工程を含む、請求項1から8に記載の組成物を調製するプロセス。急速凍結を-100°C未満で実施する、請求項11に記載の組成物を調製するプロセス。凍結乾燥を25mtorr未満の真空で実施する、請求項11に記載の組成物を調製する方法。凍結乾燥を25°C未満で実施する、請求項11に記載の組成物を調製する方法。驚くべきことに、死細胞、少なくとも1つの細胞内凍結保存剤、少なくとも1つの細胞外凍結保存剤及び賦形剤を含む、実質的に保持された免疫原特性を有する死細胞の安定組成物を調製出来ることを見出した。細胞内凍結保存剤は、単糖及び二糖等の炭水化物から選択される。驚くべきことに、無傷細胞の回収を最大にするための細胞内凍結保存剤として、トレハロースは、最高の細胞回収率を生じることが見出された。細胞内凍結保存剤として用いられる炭水化物は、1~10W/Vの濃度である。細胞外凍結保存剤は、例えばヒドロキシエチルデンプンHES、デキストラン、並びにポリビニルピロリドンPVP及びポリソルベート等の両親媒性物質から選択される。驚くべきことに、両親媒性ポリマーであるポリビニルピロリドンPVPは、細胞外凍結保存剤として、無傷細胞回収率を向上させることが見出された。細胞外凍結保存剤として用いられるPVPは、0.1~5W/Vの濃度である。用いられるPVPの分子量は、30~50kDaの範囲である。驚くべきことに、両親媒性ポリマーであるヒドロキシエチルデンプンHESは、細胞外凍結保存剤として、無傷細胞の回収率を向上させることが見出された。細胞外凍結保存剤として用いられるHESは、0.1~5W/Vの濃度である。用いられるHESの分子量は、30~50kDaの範囲である。驚くべきことに、両親媒性ポリマーであるデキストランは、細胞外凍結保存剤として、無傷細胞の回収率を向上させることが見出された。細胞外凍結保存剤として用いられるデキストランは、0.1~5W/Vの濃度である。用いられるデキストランの分子量は、好ましくは30~50kDaの範囲である。驚くべきことに、両親媒性ポリマーであるポリソルベートは、細胞外凍結保存剤として、無傷細胞の回収率を向上させることが見出された。細胞外凍結保存剤として用いられるポリソルベートは、0.1~5W/Vの濃度である。細胞外凍結保存剤として用いられる両親媒性ポリマーのポリソルベートは、ポリソルベート20、ポリソルベート40、ポリソルベート60、ポリソルベート65、ポリソルベート80から選択され、好ましくはポリソルベート80である。本発明によれば、実質的に保持された免疫原特性を有する死細胞の安定組成物を調製するプロセスは、以下の工程による:1.死細胞を細胞内凍結保存剤で処理する工程。2.死細胞を細胞外凍結保存剤で処理する工程。3.凍結乾燥前に急速冷却して配合物を凍結する工程。4.処理した死細胞を凍結乾燥する工程。5.死細胞の凍結乾燥物を再構成する工程。6.細胞完全性の保持を評価する工程。7.保存法の有効性を評価する工程。8.抗原性/免疫原性の特性保持を評価する工程。構成成分がリン酸二水素カリウム0.20g/L;塩化カリウム0.20g/L;塩化ナトリウム8.00g/L及び無水リン酸一水素ナトリウム1.15g/Lである、ダルベッコリン酸緩衝生理食塩水DPBS-塩化カルシウム及び塩化マグネシウムを含まないによって、凍結乾燥溶液をpH7.4に緩衝した。凍結乾燥緩衝液は、非還元二糖、好ましくはトレハロース約5重量/体積の最終濃度、及びポリマー、好ましくはポリビニルピロリドン分子量44K約1重量/体積の最終濃度を含有する。死細胞組成物の長期の保存に関しても、形態学的保持性、完全性、及び免疫原性の保持性を以下の通り解析した:1.形態学的プロファイリングサイズ:-フローサイトメトリー。細胞膜の完全性に関してはPKH26。細胞膜及び核膜の完全性に関しては、ヘマトキシリン及びエオジン染色。2.物理化学的プロファイリング:-細胞死の確認はTOPRO3ヨード色素を用いる。3.粒度アッセイ:-FACSFSC/SSC。4.細胞遺伝学的解析。5.DNAプロファイリング:FACSDNA容量解析6.DNA完全性を評価するためのDNA抽出、並びにアガロースゲル電気泳動。7.免疫表現型決定:-HLADR分子。8.免疫学的プロファイリング:-CD4、細胞障害性決定因子:パーフォリン及びグランザイムを用いたCD8細胞及びNK細胞の細胞障害性評価。9.機能アッセイ:-死んだ標的細胞を同定/確認及び計数するための、PKH26及びTOPRO3ヨードを用いたFACSエフェクター機能アッセイ。IFNγ及びIL-2産生脾臓細胞の定量。PKH26を用いたリンパ球増殖アッセイ。実施例1:細胞外凍結保存剤癌細胞107細胞/mLをマイコバクテリウムwMycobacteriumwMwで処理した。トリパンブルー色素による除外原理を用いて、細胞死パーセントを決定した。1500rpmで10分間遠心分離することによって、細胞をペレットにした。上清を廃棄し、そして対照ペレットをDPBS中に再懸濁した。総体積を各1mLのアリコートに分配し、そして各アリコート中の細胞を計数した。処理群ペレットを、1PVPw/vを含有する凍結乾燥緩衝溶液中に再懸濁した。各アリコートを、液体窒素-100°C未満中で急速冷却した後、凍結乾燥に供した。凍結乾燥物の再構成後に概算される処理群の無傷細胞のパーセント回収率は、19.125±3.275であった。実施例2:細胞内凍結保存剤癌細胞107細胞/mLを取り、そしてMwで処理した。トリパンブルー色素による除外原理を使用して、細胞死パーセントを決定した。1500rpmで10分間遠心分離することによって、細胞をペレットにした。上清を廃棄し、そして対照群細胞ペレットをDPBS中に再懸濁した。総体積を各1mLのアリコートに分配し、そして各アリコート中の細胞を計数した。処理群細胞ペレットを、5トレハロースw/vを含有する凍結乾燥緩衝溶液中に再懸濁した。各アリコートを、液体窒素-100°C未満中で急速冷却した後、凍結乾燥に供した。DPBS中での凍結乾燥物の再構成に際し、処理群の無傷細胞のパーセント回収率は、血球計算板を用いて概算され、15.27±0.64であった。実施例3:凍結保存剤活性のための界面活性剤ポリマー癌細胞107細胞/mLを取り、そしてMwで処理した。トリパンブルー除外アッセイを用いて、パーセント細胞生存率を決定した。1500rpmで10分間遠心分離することによって、細胞をペレットにした。上清を廃棄し、そして対照群細胞ペレットをDPBS中に再懸濁した。総体積を各1mLのアリコートに分配し、そして各アリコート中の細胞を計数した。処理群細胞ペレットを、0.05ポリソルベート80v/vを含有する凍結乾燥緩衝液中に再懸濁した。各アリコートを、液体窒素-100°C未満中で急速冷却した後、凍結乾燥に供した。DPBS中での凍結乾燥物の再構成に際し、処理群の無傷細胞のパーセント回収率は、血球計算板を用いて概算され、約0.9であった。実施例4:細胞外凍結保存剤処理後に細胞内凍結保存剤処理癌細胞107細胞/mLをMwで処理した。トリパンブルー色素による除外原理を用いて、細胞死パーセントを決定した。1500rpmで10分間遠心分離することによって、細胞をペレットにした。上清を廃棄し、そして対照群細胞ペレットをDPBS中に再懸濁した。総体積を各1mLのアリコートに分配し、そして各アリコート中の細胞を計数した。処理群細胞ペレットを、1w/vの最終濃度のPVPDPBS中中に再懸濁した。細胞懸濁物を37°Cで15分間インキュベートした。続いて、最終濃度5w/vDPBS中でトレハロースを添加した後、37°Cで15分間インキュベートした。総体積を各1mLのアリコートに分配し、そして各アリコート中の細胞を計数した。凍結乾燥前に、各アリコートを液体窒素-100°C未満中で急速冷却に供した。DPBS中での凍結乾燥物の再構成に際し、処理群の無傷細胞のパーセント回収率は、28.08±3.63であった。実施例5:細胞内凍結保存剤処理後に細胞外凍結保存剤処理癌細胞107細胞/mLをMwで処理した。トリパンブルー除外アッセイを用いて、パーセント細胞生存率を決定した。1500rpmで10分間遠心分離することによって、細胞をペレットにした。上清を廃棄し、そして対照細胞ペレットをDPBS中に再懸濁した。総体積を各1mLのアリコートに分配し、そして各アリコート中の細胞を計数した。処理群細胞ペレットを5w/vの最終濃度のトレハロースDPBS中中に再懸濁した後、37°Cで15分間インキュベートした。続いて、最終濃度1w/vでPVPを添加し、そして細胞懸濁物を37°Cで15分間インキュベートした。総体積を各1mLのアリコートに分配し、そして各アリコート中の細胞を計数した。凍結乾燥前に、すべてのアリコートを液体窒素-100°C未満中で急速冷却に供した。処理群の無傷細胞のパーセント回収率は、55.61±4.35であった。実施例6:細胞内凍結保存剤後に細胞外凍結保存剤癌細胞107細胞/mLをMwで処理した。トリパンブルー色素による除外原理を用いて、細胞死パーセントを決定した。1500rpmで10分間遠心分離することによって、細胞をペレットにした。上清を廃棄し、そして対照群細胞ペレットをDPBS中に再懸濁した。総体積を各1mLのアリコートに分配し、そして各アリコート中の細胞を計数した。処理群細胞ペレットを5w/vの最終濃度のデキストロースDPBS中中に再懸濁した後、37°Cで15分間インキュベートした。続いて、最終濃度1w/vでHESを添加し、そして細胞懸濁物を37°Cで15分間インキュベートした。総体積を各1mLのアリコートに分配し、そして各アリコート中の細胞を計数した。凍結乾燥前に、すべてのアリコートを液体窒素-100°C未満中で急速冷却に供した。凍結乾燥後、処理群の無傷細胞のパーセント回収率は、~54.88であったが、細胞形態が乱されていた。実施例7:細胞内凍結保存剤後に細胞外凍結保存剤癌細胞107細胞/mLをMwで処理した。トリパンブルー除外アッセイを用いて、パーセント細胞生存率を決定した。1500rpmで10分間遠心分離することによって、細胞をペレットにした。上清を廃棄し、そして対照群細胞ペレットをDPBS中に再懸濁した。総体積を各1mLのアリコートに分配し、そして各アリコート中の細胞を計数した。処理群細胞ペレットを5w/vの最終濃度のグリセロールDPBS中中に再懸濁した後、37°Cで15分間インキュベートした。続いて、最終濃度1w/vでHESを添加し、そして細胞懸濁物を37°Cで15分間インキュベートした。総体積を各1mLのアリコートに分配し、そして凍結乾燥前に、各アリコート中の細胞を計数した。すべてのアリコートを液体窒素-100°C未満中で急速冷却に供した。凍結乾燥後、細胞形態が乱されていたが、処理群の無傷細胞のパーセント回収率は、~46.19であった。実施例8:細胞内凍結保存剤後に細胞外凍結保存剤癌細胞107細胞/mLをMwで処理した。トリパンブルー色素による排除原理を用いて、細胞死パーセントを決定した。1500rpmで10分間遠心分離することによって、細胞をペレットにした。上清を廃棄し、そして対照群細胞ペレットをDPBS中に再懸濁した。総体積を各1mLのアリコートに分配し、そして各アリコート中の細胞を計数した。処理群細胞ペレットを5w/vの最終濃度のスクロースDPBS中中に再懸濁した後、37°Cで15分間インキュベートした。続いて、最終濃度1w/vでHESを添加し、そして細胞懸濁物を37°Cで15分間インキュベートした。総体積を各1mLのアリコートに分配し、そして凍結乾燥前に、各アリコート中の細胞を計数した。すべてのアリコートを液体窒素-100°C未満中で急速冷却に供した。凍結乾燥後、処理群の無傷細胞のパーセント回収率は、~47.25であったが、細胞形態が乱されていた。実施例9:細胞外凍結保存剤後に添加剤と共に細胞内凍結保存剤癌細胞107細胞/mLをMwで処理した。トリパンブルー除外アッセイを用いて、パーセント細胞生存率を決定した。1500rpmで10分間遠心分離することによって、細胞をペレットにした。上清を廃棄し、そして対照群細胞ペレットをDPBS中に再懸濁した。総体積を各1mLのアリコートに分配し、そして各アリコート中の細胞を計数した。処理群細胞ペレットを1w/vの最終濃度のPVPDPBS中中に再懸濁し、その後、37°Cで15分間インキュベートした。続いて、最終濃度5w/vのトレハロースを添加し、その後、最終濃度1で添加剤ニコチン酸0.75mM;グルタミン0.75mM;MgCl20.49mM及びヒスチジン5mMを添加した。細胞懸濁物を37°Cで15分間インキュベートした。凍結乾燥前に、各アリコート中の細胞を計数した。すべてのアリコートを液体窒素-100°C未満中で急速冷却に供した。凍結乾燥後、処理群の無傷細胞のパーセント回収率は、~11.0であった。実施例10:細胞内凍結保存剤後に添加物と共に細胞外凍結保存剤癌細胞107細胞/mLをMwで処理した。トリパンブルー色素による除外原理を用いて、細胞死パーセントを決定した。1500rpmで10分間遠心分離することによって、細胞をペレットにした。上清を廃棄し、そして対照群細胞ペレットをDPBS中に再懸濁した。総体積を各1mLのアリコートに分配し、そして各アリコート中の細胞を計数した。処理群細胞ペレットを5w/vの最終濃度のトレハロースDPBS中中に再懸濁した後、37°Cで15分間インキュベートした。続いて、最終濃度1w/vでPVPを添加し、その後、最終濃度1の添加剤ニコチン酸0.75mM;グルタミン0.75mM;MgCl20.49mM及びヒスチジン5mMを添加した。細胞懸濁物を37°Cで15分間インキュベートした。凍結乾燥前に、各アリコート中の細胞を計数した。すべてのアリコートを液体窒素中で急速冷却に供した。凍結乾燥後、処理群の無傷細胞のパーセント回収率は、~48.9であった。実施例11:凍結法1×107細胞/mLをMwで処理した。トリパンブルー色素による除外原理を用いた細胞死パーセントは、60であった。5つのアリコートを作製し、そして1500rpmで10分間遠心分離することによって、細胞をペレットにした。得られた5つの細胞ペレットのうち、各1つを100μLの50×トレハロース中に再懸濁し、その後、37°Cで15分間インキュベートした。DPBSで最終体積を1mLにした。各アリコートから200μLを、適宜ラベルしたガラスバイアル中に分配し、そして各アリコート中の細胞を計数した。すべてのアリコートを、緩慢凍結、すなわち8°Cで1時間、4°Cで2時間、-20°C4時間、そして最後に-70°Cで8時間に供した。1つの凍結対照を除き、残りすべてのアリコートをおよそ48時間凍結乾燥に供した。凍結乾燥物をDPBS200μLで再構成し、そして血球計算板を用いて、無傷細胞の総数を計数した。凍結対照は13の無傷細胞を生じ、一方、凍結乾燥は2の回収率となった。実施例12:凍結法1×107細胞/mLをMwで処理した。トリパンブルー色素により除外原理を用いた細胞死パーセントは、60であった。5つのアリコートを作製し、そして1500rpmで10分間遠心分離することによって、細胞をペレットにした。得られた5つの細胞ペレットのうち、各1つを100μLの10×PVP中に再懸濁し、その後、37°Cで15分間インキュベートした。DPBSで最終体積を1mLにした。各アリコートから200μLを、適宜ラベルしたガラスバイアル中に分配し、そして各アリコート中の細胞を計数した。すべてのアリコートを緩慢凍結、すなわち8°Cで1時間、4°Cで2時間、-20°Cで4時間、そして最後に-70°Cで8時間に供した。1つの凍結対照を除き、残りすべてのアリコートをおよそ48時間凍結乾燥に供した。凍結乾燥物をDPBS200μLで再構成し、そして血球計算板を用いて、無傷細胞の総数を計数した。凍結対照は32の無傷細胞を生じ、一方、凍結乾燥は5回収率であった。実施例13:凍結法1×107細胞/mLをMwで処理した。トリパンブルー色素による除外原理を用いた細胞死パーセントは、60であった。5つのアリコートを作製し、そして1500rpmで10分間遠心分離することによって、細胞をペレットにした。得られた5つの細胞ペレットのうち、各1つを100μLの10×硫酸デキストラン中に再懸濁し、その後、37°Cで15分間インキュベートした。DPBSで最終体積を1mLにした。各アリコートから200μLを、適宜ラベルしたガラスバイアル中に分配し、そして各アリコート中の細胞を計数した。すべてのアリコートを緩慢凍結、すなわち8°Cで1時間、4°Cで2時間、-20°Cで4時間、そして最後に-70°Cで8時間に供した。1つの凍結対照を除き、残りすべてのアリコートをおよそ48時間凍結乾燥に供した。凍結乾燥細胞ペレットをDPBS200μLで再構成し、そして血球計算板を用いて、無傷細胞の総数を計数した。凍結対照は5の無傷細胞を生じ、一方、凍結乾燥後には、無傷細胞はまったく観察されなかった。いくつかの細胞内及び細胞外凍結保存剤が、死細胞の形態及び無傷性を保存可能であったが、トレハロース及びPVPは、他のものよりも好適であるようである。実施例141×107細胞/mLのB16F1細胞をMwで処理した。トリパンブルー色素による除外原理を用いた細胞死パーセントは、25であった。1500rpmで10分間遠心分離することによって、細胞をペレットにした。上清を廃棄した。細胞ペレットを100μLの50×トレハロース又は100μLの10×PVPのいずれかに再懸濁し、そして37°Cで15分間インキュベートした。DPBSで最終体積を1mLにした。各200μLの5つのアリコートを作製し、そして凍結乾燥前に、各アリコート中の細胞を計数した。試料を液体窒素中で急速凍結した。1つの凍結対照以外、残りの試料をすべておよそ48時間、凍結乾燥に供した。凍結乾燥物を200μLのDPBSで再構成し、そして血球計算板を用いて、無傷細胞の総数を計数した。凍結対照は39の無傷細胞を生じ、一方、凍結乾燥は、9の無傷細胞回収率となった。2つの凍結保存剤の組合せは、どちらかが単独であるよりも好適であるようである。実施例151×107細胞/mLの濃度のHEK-293をMwで処理した。トリパンブルー色素による除外原理を用いた細胞死パーセントは、80であった。1500rpmで10分間遠心分離することによって、細胞をペレットにした。上清を廃棄した。細胞ペレットを5mLのDPBS中に再懸濁し、その全容積を各1mLの5つのアリコートに分配した。各アリコート中の細胞を計数した後、1500rpmで10分間遠心分離した。細胞ペレットを100μLの50×トレハロース中に再懸濁し、そして37°Cで30分間インキュベートした。続いて100μLの10×PVPを添加し、そして試料を再び、37°Cで30分間インキュベートした。DPBSで最終体積を1mLにした。その全容積を各200μLのアリコートに分配した。すべてのアリコートを液体窒素中で急速凍結し、そして1つの凍結対照以外、残りの試料をすべておよそ48時間、凍結乾燥に供した。凍結乾燥物を200μLのDPBSで再構成し、そして血球計算板を用いて、無傷細胞の総数を計数した。凍結対照は67の無傷細胞を生じ、一方、凍結乾燥は、49の無傷細胞回収率となった。2つの凍結保存剤の組合せは、どちらか単独よりも好適であるようである。PVPをトレハロースに添加すると、どちらかを単独で用いるか又はPVPにトレハロースを添加した場合とは対照的に、無傷細胞の高回収率~50となった。実施例161×107細胞/mLの濃度のB16F10細胞をMwで処理した。トリパンブルー除外アッセイを用いて決定した細胞死パーセントは、31であった。その全容積を各1mLの10個のアリコートに分配し、そして処理前に各アリコート中の細胞数を計数した。1500rpmで10分間遠心分離することによって、細胞をペレットにした。細胞ペレットを100μLの50×トレハロース中に再懸濁し、そして37°Cで15分間インキュベートした。次いで100μLの10×HESを添加し、そして試料を再び、37°Cで15分間インキュベートした。DPBSで最終体積を1mLにした。200μLを、適宜ラベルしたガラスバイアル中に分配した。試料を液体窒素中で急速凍結し、そして1つの凍結対照以外、残りの試料をすべておよそ48時間、凍結乾燥に供した。凍結乾燥物を200μLのDPBSで再構成し、そして血球計算板を用いて、無傷細胞の総数を計数した。凍結対照は95の無傷細胞を生じ、一方、凍結乾燥は、70の無傷細胞回収率となったが、かなりの量の細胞が互いに凝集した。トレハロースPVPは、試験したすべての他の異なる凍結保存剤の組合せの中で、最適のようである。実施例17:細胞サイズ及び粒度の評価フローサイトメトリーは、媒体における均質又は不均質の組織/細胞懸濁物から、細胞サイズ及び顆粒密度に関する情報を提供し得る。細胞サイズは、細胞膜から生じる回折レーザー光として測定され、そして粒度は、細胞顆粒をターゲットとした際に放出される反射及び屈折光の測定値である。細胞サイズは、ドットプロットの前方散乱ForwardScatter;FSCスケール上で測定され、そして粒度は、ドットプロットの側方散乱SideScatter;SSCスケール上で測定される。凍結乾燥細胞の評価は、図1に示すように、2つの別個の集団を示す。集団P1は、集団P2より低いFSC及びSSC集団として出現し、集団P2は、集団P1に比較するとサイズがより大きく、そしてより多くの顆粒を有していることが示唆される。実施例18:細胞完全性の決定凍結乾燥細胞を細胞膜脂質結合分子PKH26で染色した。PKH26は、青色レーザーで励起され、そして551nmの光を吸収し、567nmで光を放出する。図2は、P1及びP2集団の両方がPKH26色素を取り込むことを示す。凍結乾燥細胞をPKH26色素で染色した。P1集団の90.7、及びP2集団の96.3がPKH26陽性である。実施例19:細胞死の決定細胞膜が障害を受けた細胞内に浸透するヨウ化プロピジウムPI色素によって細胞死を評価した。図3は、P1及びP2の両方がPI色素を取り込んだことを示し、どちらの集団も死んでいることが示唆される。凍結乾燥細胞は、PI色素で染色された。P1集団の78.3、及びP2集団の97.8がPI陽性である。実施例20:無傷の細胞膜及び核膜を有する細胞配合物をヘマトキシリン及びエオシンで染色して、細胞質及び核膜の完全性を評価した。無傷核を有する無傷細胞が観察された図4。実施例21:1×107細胞/mLの濃度のMiaPaCa-2細胞をMwで処理した。トリパンブルー除外アッセイを用いて決定した細胞死パーセントは、100であった。その全容積を各5mLの2つのアリコートに分配し、そして処理前に各アリコートの細胞数を計数した。1500rpmで10分間遠心分離することによって、細胞をペレットにした。細胞ペレットを100μLの50×トレハロース中に再懸濁し、そして37°Cで15分間インキュベートした。続いて100μLの10×PVPを添加し、そしてアリコートを再び、37°Cで15分間インキュベートした。200μLを、適宜ラベルしたガラスバイアル中に分配し、そして液体窒素中で急速凍結した。バイアル1セットをおよそ48時間凍結乾燥した。凍結乾燥物を200μLのDPBSで再構成し、そして第1日及び第21日に細胞懸濁物をBalb/Cマウスに注射した。第1日及び第21日に、対照群においては非凍結乾燥配合細胞を投与した。第28日、すべてのマウスを屠殺し、そして脾臓細胞を単離した。インターフェロンガンマELISPOTを行って、免疫反応を評価した。凍結乾燥細胞は、インターフェロンガンマを産生する同数の細胞を示し、免疫原性が保持され、むしろわずかにより優れていることが示された図5。実施例22:死んだ癌細胞107細胞/mLを1500rpmで10分間遠心分離することによってペレットにした。上清を廃棄した。全容量を各1mLのアリコートに分配し、そして各アリコートの細胞を計数した。処理群細胞ペレットを最終濃度5w/vDPBS中のトレハロース中に再懸濁し、その後、37°Cで15分間インキュベートした。続いて、最終濃度1w/vにPVPを添加し、そして細胞懸濁物を37°Cで15分間インキュベートした。全容量を各1mLのアリコートに分配し、そして各アリコート中の細胞を計数した。凍結乾燥前に、すべてのアリコートを液体窒素中の急速凍結に供した。細胞をDPBS中で再構成した。スライドガラス上に塗抹標本を調製し、風乾し、そしてアセトンを用いて固定した。PBS中に5BSA、血清、及び2トリトンTriton-X100を含有するブロッキング緩衝液で1時間、ブロッキングした。細胞表面マーカーを標的とした一次抗体を1:100の希釈で検出に用い、該抗体と共に1時間インキュベートした。トリトンを含有するPBSで洗浄した。抗マウスIgG-FITC標識二次抗体1:1000とインキュベートした。トリトンを含有するPBSで洗浄した。図6に示すように、蛍光顕微鏡下で表面タンパク質が検出される。死んだ組織又は生存組織の試料の輸送に該方法を用いて、そして後に、診断又は法医学のためにこれらを用いることも可能である。細胞内凍結保存剤及び細胞外凍結保存剤はどちらも、Mw処理細胞の形態を保持することが可能である。PVP及びトレハロースは、細胞が凝集するように見受けられたデキストラン及びポリソルベート-80両方よりも好適であるようである。2つの凍結保存剤の組合せは、どちらか単独よりも好適であるようである。トレハロースにPVPを添加すると、どちらかを単独で用いるか又はPVPにトレハロースを添加した場合とは対照的に、無傷細胞の高い回収率およそ50に繋がった。凍結乾燥による本保存方法は、免疫原性が保持され、かつ構造及び核酸が無傷である全細胞ワクチン候補を保存するために用いてもよい。当該方法はまた、法医学応用及び診断目的のため、細胞試料を保存するのに用いることも出来る。