サトウキビの染色体における配列番号1に示す塩基配列及び配列番号13に示す塩基配列により挟まれる領域、配列番号14に示す塩基配列及び配列番号22に示す塩基配列により挟まれる領域、又は配列番号23に示す塩基配列及び配列番号29に示す塩基配列により挟まれる領域から選ばれる連続する核酸領域からなる、サトウキビ茎長関連マーカー。上記連続する核酸領域は、配列番号1~29からなる群から選ばれるいずれか1の塩基配列を含むことを特徴とする請求項1記載のサトウキビ茎長関連マーカー。上記連続する核酸領域は、サトウキビの染色体における配列番号6に示す塩基配列と配列番号8に示す塩基配列とにより挟み込まれる領域、配列番号18に示す塩基配列と配列番号19に示す塩基配列とにより挟み込まれる領域、又は配列番号24に示す塩基配列と配列番号28に示す塩基配列とにより挟み込まれる領域に位置することを特徴とする請求項1記載の茎長関連マーカー。少なくとも一方の親がサトウキビ植物である後代植物の染色体を抽出する工程と、上記で得られた染色体における請求項1乃至3いずれか一項に記載のサトウキビ茎長関連マーカーの存在非存在を測定する工程とを含む、茎長が増大したサトウキビ系統の製造方法。上記測定する工程では、上記サトウキビ茎長関連マーカーに対応するプローブを備えるDNAチップを使用することを特徴とする請求項4記載のサトウキビ系統の製造方法。上記後代植物は種子又は幼苗であり、当該種子又は幼苗から染色体を抽出することを特徴とする請求項4記載のサトウキビ系統の製造方法。そこで、本発明は、サトウキビ植物の量的形質の中でも茎長に関連するマーカーを提供することを目的とする。本発明者らは、上記課題を解決するために鋭意検討を重ねた結果、サトウキビ植物における多数のマーカーを準備し、交雑後代系統における量的形質とマーカーとの連鎖解析によって、茎長が増大するといった量的形質に連鎖するマーカーを見いだし、本発明を完成するに至った。本発明は以下を包含する。1サトウキビの染色体における配列番号1に示す塩基配列及び配列番号13に示す塩基配列により挟まれる領域、配列番号14に示す塩基配列及び配列番号22に示す塩基配列により挟まれる領域、又は配列番号23に示す塩基配列及び配列番号29に示す塩基配列により挟まれる領域から選ばれる連続する核酸領域からなる、サトウキビ茎長関連マーカー。2上記核酸領域は、配列番号1~29からなる群から選ばれるいずれか1の塩基配列を含むことを特徴とする1記載のサトウキビ茎長関連マーカー。3上記核酸領域は、サトウキビの染色体における配列番号6に示す塩基配列と配列番号8に示す塩基配列とにより挟み込まれる領域、配列番号18に示す塩基配列と配列番号19に示す塩基配列とにより挟み込まれる領域、又は配列番号24に示す塩基配列と配列番号28に示す塩基配列とにより挟み込まれる領域に位置することを特徴とする1記載の茎長関連マーカー。4少なくとも一方の親がサトウキビ植物である後代植物の染色体を抽出する工程と、上記で得られた染色体における上記1乃至3いずれか1に記載のサトウキビ茎長関連マーカーの存在非存在を測定する工程とを含む、茎長が増大したサトウキビ系統の製造方法。5上記測定する工程では、上記サトウキビ茎長関連マーカーに対応するプローブを備えるDNAチップを使用することを特徴とする4記載のサトウキビ系統の製造方法。6上記後代植物は種子又は幼苗であり、当該種子又は幼苗から染色体を抽出することを特徴とする4記載のサトウキビ系統の製造方法。本発明によれば、サトウキビにおける量的形質の中でも茎長が増大するといった特性に連鎖する新規のサトウキビ茎長関連マーカーを提供することができる。本発明に係るサトウキビ茎長関連マーカーを利用することによって、サトウキビの交配系統における茎長を識別することができる。これにより、茎長が増大した特性を有するサトウキビ系統を非常に低コストに識別することができる。以下、本発明に係るサトウキビ茎長関連マーカー及びその利用方法、特にサトウキビ茎長関連マーカーを用いたサトウキビ系統の製造方法について説明する。サトウキビ茎長関連マーカー本発明に係るサトウキビ茎長関連マーカーとは、サトウキビの染色体上に存在する特定の領域であり、サトウキビの茎長を増大させる形質の原因遺伝子群に連鎖して、サトウキビ茎長の増大という形質を判別できる機能を有する。すなわち、既知のサトウキビ品種系統を用いて得られた後代系統において、サトウキビ茎長関連マーカーの存在を確認することで茎長の増大という形質を有する系統であると判断することができる。ここで、茎長の増大とは、特に、発芽後から生育初期における茎長の増大を含む意味であり、生育初期における茎成長度が速いと言い換えることができる。なお、生育初期とは、発芽後から約5ヵ月までの期間を意味する。ここで、サトウキビとは、イネ科サトウキビ属に属する植物を意味する。また、サトウキビとは、所謂、高貴種学名:Saccharumofficinarumと野生種学名:Saccharumspontaneumのいずれも含むことを意味する。既知のサトウキビ品種系統としては、特に限定されず、日本国内にて使用可能なあらゆる品種系統、日本国外において使用されている品種系統等を含む意味である。例えば、サトウキビ日本国内育成品種としては、特に限定されないが、Ni1、NiN2、NiF3、NiF4、NiF5、Ni6、NiN7、NiF8、Ni9、NiTn10、Ni11、Ni12、Ni14、Ni15、Ni16、Ni17、NiTn19、NiTn20、Ni22及びNi23等を挙げることができる。また、サトウキビ日本国内主要品種としては、特に限定されないが、NiF8、Ni9、NiTn10及びNi15等を挙げることができる。さらに、サトウキビ日本国内導入主要品種としては、特に限定されないが、F177、NCo310及びF172等を挙げることができる。また、後代系統は、母本及び父本の両方がサトウキビ品種系統である同種交配による系統であっても良いし、いずれか一方がサトウキビ品種系統であり他方が近縁のErianthusarundinaceusであるような交雑系統であっても良い。また、後代系統は、いわゆる戻し交配によって得られたものでも良い。サトウキビ茎長関連マーカーは、サトウキビの染色体から独自に取得した3004個のマーカーを含む遺伝子連鎖地図とサトウキビ茎長データとを用いたQTLQuantitativeTraitLoci解析によって新たに同定されたものである。なお、サトウキビ茎長は、多数の遺伝子が関与していると考えられ連続分布をとる量的形質である。QTL解析には、遺伝解析ソフトQTLCartographerWangSCJBastenandZBZengWindowsQTLCartographer25DepartmentofStatisticsNorthCarolinaStateUniversityRaleighNCを使用し、CompositeintervalmappingCIM法を適用している。具体的に、上述したQTL解析により、ロッドスコアLODscoreが所定の閾値例えば25以上となるピークを上記遺伝子連鎖地図に含まれる3つの領域で見いだした。すなわち、当該ピークを含む約399cMセンチモルガン領域、当該ピークを含む約211cM領域、及び当該ピークを含む約152cM領域の3領域を特定した。ここで、モルガンMは、染色体上の遺伝子間の距離を相対的に示した単位であり、交叉価をパーセントにした値である。サトウキビの染色体において、1cMは、約2000kbに相当する。なお、このピーク位置又はその近傍には、茎長を増大させる形質の原因遺伝子群が存在することが示唆される。上記ピークを含む399cMの領域は、上記マーカーのうち表1に示す13種類のマーカーがこの順で含まれる領域である。上記ピークを含む211cMの領域は、上記マーカーのうち表2に示す9種類のマーカーがこの順で含まれる領域である。上記ピークを含む152cMの領域は、上記マーカーのうち表3に示す7種類のマーカーがこの順で含まれる領域である。なお、表1~3において、連鎖群とは、QTL解析において特定された複数の連鎖群についてそれぞれ付された番号である。表1~3においてマーカー名とは、本発明で独自に取得したマーカーに付された名称である。表1~3においてシグナル閾値とは、マーカーの有無を判定するための閾値である。また、399cMの領域に含まれるピークは、配列番号6に示す塩基配列からなるマーカーN810652及び配列番号8に示す塩基配列からなるマーカーN827138により挟み込まれる領域に存在している。211cMの領域に含まれるピークは、配列番号18に示す塩基配列からなるマーカーN819412及び配列番号19に示す塩基配列からなるマーカーN829748により挟み込まれる領域に存在している。152cMの領域に含まれるピークは、配列番号24に示す塩基配列からなるマーカーN826007及び配列番号28に示す塩基配列からなるマーカーN829577により挟み込まれる領域に存在している。表1~3に示したマーカーが含まれる3つの領域から選ばれる連続した核酸領域を、サトウキビ茎長関連マーカーとして使用することができる。ここで、核酸領域とは、サトウキビの染色体に存在する他の領域との同一性が95以下、好ましくは90以下、より好ましくは80以下、最も好ましくは70以下となるような塩基配列からなる領域を意味する。サトウキビ茎長関連マーカーとなる核酸領域と他の領域との同一性が上記範囲であれば、定法に従って、当該核酸領域を特異的に検出することができる。ここで、同一性の値は、例えばBLASTを用いてデフォルトパラメータを用いて算出することができる。また、サトウキビ茎長関連マーカーとなる核酸領域の塩基長は、少なくとも8塩基長以上、好ましくは15塩基長以上、より好ましくは20以上、最も好ましくは30塩基長とすることができる。サトウキビ茎長関連マーカーとなる核酸領域の塩基長が上記範囲であれば、定法に従って、当該核酸領域を特異的に検出することができる。特に、サトウキビ茎長関連マーカーとしては、399cMの領域に含まれる13種類のマーカーのうち、配列番号6に示す塩基配列と配列番号8に示す塩基配列とにより挟み込まれる領域から選ばれることが好ましい。上記ピークが配列番号6に示す塩基配列と配列番号8に示す塩基配列とにより挟み込まれる領域に存在するためである。また、サトウキビ茎長関連マーカーとしては、211cMの領域に含まれる9種類のマーカーのうち、配列番号18に示す塩基配列と配列番号19に示す塩基配列とにより挟み込まれる領域から選ばれることが好ましい。上記ピークが配列番号18に示す塩基配列と配列番号19に示す塩基配列とにより挟み込まれる領域に存在するためである。さらに、サトウキビ茎長関連マーカーとしては、152cMの領域に含まれる7種類のマーカーのうち、配列番号24に示す塩基配列と配列番号28に示す塩基配列とにより挟み込まれる領域から選ばれることが好ましい。上記ピークが配列番号24に示す塩基配列と配列番号28に示す塩基配列とにより挟み込まれる領域に存在するためである。また、サトウキビ茎長関連マーカーとしては、上記表1~3に示した29種類のマーカーから選ばれる1種類のマーカーを含む核酸領域とすることもできる。例えば、サトウキビ茎長関連マーカーとしては、399cMの領域に含まれるピークの位置に最も近い配列番号7に示す塩基配列からなるマーカーN812117を含む核酸領域、211cMの領域に含まれるピークの位置に最も近い配列番号19に示す塩基配列からなるマーカーN829748を含む核酸領域、152cMの領域に含まれるピークの位置に最も近い配列番号26に示す塩基配列からなるマーカーN821523を含む核酸領域を使用することが好ましい。このとき、マーカーを含む核酸領域の塩基配列は、当該マーカーの塩基配列に基づいて設計したプライマーを用いたインバースPCRによって特定することができる。さらに、サトウキビ茎長関連マーカーとしては、上記29種類のマーカーそのものを使用することができる。すなわち、これら29種類のマーカーのうち1種類以上のマーカーをサトウキビ茎長関連マーカーとして使用することができる。例えば、サトウキビ茎長関連マーカーとしては、399cMの領域に含まれるピークの位置に最も近い配列番号7に示す塩基配列からなるマーカーN812117、211cMの領域に含まれるピークの位置に最も近い配列番号19に示す塩基配列からなるマーカーN829748、152cMの領域に含まれるピークの位置に最も近い配列番号26に示す塩基配列からなるマーカーN821523を使用することが好ましい。サトウキビにおけるマーカーの同定本発明では、上述したように、サトウキビの染色体から独自に取得した3004個のマーカーからサトウキビ茎長関連マーカーを特定した。ここでは、これら3004個のマーカーについて説明する。これマーカーを同定する際には、特願2009283430号に開示された方法を適用したDNAマイクロアレイを使用することができる。具体的に、サトウキビの染色体から独自に取得した3004個のマーカーは、特願2009283430号に開示された方法により設計されたプローブを有するDNAマイクロアレイを使用する。プローブの設計方法は、図1に示すように、先ず、サトウキビからゲノムDNAを抽出する工程1a。次に、抽出したゲノムDNAを1又は複数の制限酵素により消化する工程1b。なお、図1に示した例では、制限酵素A及び制限酵素Bの2種類の制限酵素をこの順で用いてゲノムDNAを消化している。ここで、制限酵素としては、特に限定されないが、例えば、PstI、EcoRI、HindIII、BstNI、HpaII、HaeIII等を使用することができる。特に制限酵素としては、ゲノムDNAを完全に消化した際に20~10000塩基長のゲノムDNA断片となるよう、認識配列の出現頻度等を考慮して適宜選択することができる。また、複数の制限酵素を使用する場合、全ての制限酵素を使用した後のゲノムDNA断片が200~6000塩基長となっていることが好ましい。さらに、複数の制限酵素を使用する場合、処理に供する制限酵素の順序は特に限定されず、また、処理条件溶液組成や温度等が共通する場合には複数の制限酵素を同一の反応系で使用しても良い。すなわち、図1に示した例においては、制限酵素A及び制限酵素Bをこの順で使用してゲノムDNAを消化しているが、制限酵素A及び制限酵素Bを同じ反応系で同時に使用してゲノムDNAを消化しても良いし、制限酵素B及び制限酵素Aをこの順で使用してゲノムDNAを消化してもよい。さらに、使用する制限酵素の数は3以上であってもよい。次に、制限酵素処理後のゲノムDNA断片に対してアダプターを結合する工程1c。ここで、アダプターとは、上述した制限酵素処理によって得られたゲノムDNA断片の両端に結合できるものであれば特に限定されない。アダプターとしては、例えば、制限酵素処理によってゲノムDNAの両末端に形成される突出末端粘着末端に対して相補的な一本鎖を有し、詳細を後述する増幅処理の際に使用するプライマーがハイブリダイズしうるプライマー結合配列を有するものを使用することができる。また、アダプターとしては、上記突出末端粘着末端に対して相補的な一本鎖を有し、クローニングする際のベクターに組み入れるための制限酵素認識部位を有するものを使用することもできる。また、複数の制限酵素を使用してゲノムDNAを消化した場合には、各制限酵素に対応する複数のアダプターを準備して使用することができる。すなわち、複数の制限酵素でゲノムDNAを消化した場合に生ずる複数種類の突出末端のそれぞれに対して、相補的な一本鎖を有する複数のアダプターを使用することができる。このとき、複数の制限酵素に対応する複数のアダプターは、共通するプライマーがハイブリダイズできるように共通するプライマー結合配列を有しているものであっても良いし、それぞれ異なるプライマーがハイブリダイズできるように異なるプライマー結合配列を有するものであっても良い。さらに、複数の制限酵素を使用してゲノムDNAを消化した場合、アダプターとしては、使用した複数の制限酵素のなかから選ばれる1つ制限酵素若しくは、使用した制限酵素のうち一部の制限酵素に対応するアダプターを準備して使用することもできる。次に、両末端にアダプターが付加されたゲノムDNA断片を増幅する工程1d。プライマー結合配列を有するアダプターを使用した場合には、当該プライマー結合配列にハイブリダイズできるプライマーを使用することで上記ゲノムDNA断片を増幅することができる。或いは、アダプターを付加したゲノムDNA断片を、アダプター配列を利用してベクターにクローニングし、当該ベクターにおける所定の領域にハイブリダイズできるプライマーを用いてゲノムDNA断片を増幅することができる。なお、プライマーを用いたゲノムDNA断片の増幅反応としては、一例としてPCRを使用することができる。また、複数の制限酵素を使用してゲノムDNAを消化するとともに、各制限酵素に対応する複数のアダプターをゲノムDNA断片に連結した場合、複数の制限酵素を用いた処理によって得られたゲノムDNA断片の全てにアダプターが連結されることとなる。この場合、アダプターに含まれるプライマー結合配列を用いて核酸増幅反応を行うことで、得られた全てのゲノムDNA断片を増幅することができる。或いは、複数の制限酵素を使用してゲノムDNAを消化するとともに、使用した複数の制限酵素のなかから選ばれる1つ制限酵素若しくは、使用した制限酵素のうち一部の制限酵素に対応するアダプターをゲノムDNA断片に連結した場合、得られたゲノムDNA断片のうち、選ばれた制限酵素の認識配列を両末端に有するゲノムDNA断片のみを増幅することができる。次に、増幅されたゲノムDNA断片の塩基配列を決定し工程1e、当該ゲノムDNA断片より短い塩基長を有し、ゲノムDNA断片内の少なくとも一部をカバーする1又は複数の領域を特定し、特定した1又は複数の領域を、サトウキビにおけるプローブとして設計する工程1f。ゲノムDNA断片の塩基配列を決定する方法は、特に限定されず、サンガー法等を適用したDNAシークエンサーを利用した従来公知の方法を使用することができる。ここで、設計する領域としては、上述したように、例えば20~100塩基長、好ましくは30~90塩基長、より好ましくは50~75塩基長とする。以上のように、サトウキビから抽出したゲノムDNAを使用して多数のプローブを設計し、設計したプローブの塩基配列に基づいて、担体上にて目的の塩基配列を有するオリゴヌクレオチドを合成することでDNAマイクロアレイを作製することができる。このように作製したDNAマイクロアレイを使用することで、上述した配列番号1~29に示した29種類のサトウキビ茎長関連マーカーを含む3004個のマーカーを同定することができる。より具体的に、本発明者らは、既知のサトウキビ品種NiF8、Ni9及びこれらの交配後代系統191系統について、上述したDNAマイクロアレイを用いてシグナルデータを取得した。そして、得られたシグナルデータから遺伝子型データを取得し、この遺伝子型データを元にして、遺伝地図作成ソフトウェアAntMapIwataHNinomiyaSAntMapconstructinggeneticlinkagemapsusinganantcolonyoptimizationalgorithmBreedSci56371378を使用し、遺伝距離計算式Kosambiにより染色体におけるマーカーの位置情報を算出した。さらに、取得したマーカーの位置情報をもとに、MapmakerEXPver30AWhiteheadInstituteforBiomedicalResearchTechnicalReportThirdEditionJanuary1993により遺伝地図データシートを作成した。その結果、上述した配列番号1~29に示した29種類のサトウキビ茎長関連マーカーを含む3004個のマーカーを同定している。サトウキビ茎長関連マーカーの利用サトウキビ茎長関連マーカーを利用することで、後代系統等に茎長の表現型が未知のサトウキビ系統について茎長の増大という表現型を示す系統であるか判断することができる。ここで、サトウキビ茎長関連マーカーを利用するとは、当該マーカーに対応するプローブを有するDNAマイクロアレイを利用する形態を含む意味である。サトウキビ茎長関連マーカーに対応するプローブとは、上述のように定義されたサトウキビ茎長関連マーカーに対して、ストリンジェントな条件下で特異的にハイブリダイズできるオリゴヌクレオチドを意味する。このようなオリゴヌクレオチドは、例えば、上述のように定義されたサトウキビ茎長関連マーカーの塩基配列又はその相補鎖の少なくとも連続する10塩基、15塩基、20塩基、25塩基、30塩基、35塩基、40塩基、45塩基、50塩基又はそれ以上の塩基長の部分領域若しくは全領域として設計することができる。なお、このプローブを有するDNAマイクロアレイとしては、ガラスやシリコーン等の平面基板を担体とするマイクロアレイや、マイクロビーズを担体とするビーズアレイ、或いは中空繊維の内壁にプローブを固定する3次元マイクロアレイ等の如何なるタイプのマイクロアレイであってもよい。以上のように作製されたDNAマイクロアレイを使用することで、後代系統等に代表される茎長の表現型が未知のサトウキビ系統について、茎長の増大という表現型を示す系統であるか判断することができる。なお、上述したDNAマイクロアレイを使用する方法以外であっても、従来公知の手法を用いて上述したサトウキビ茎長関連マーカーを検出して、茎長の表現型が未知のサトウキビ系統について茎長の増大という形質を有する系統であるか判断してもよい。DNAマイクロアレイを使用する方法をより詳細に説明する。図2に示すように、先ず供試サトウキビからゲノムDNAを抽出する。この供試サトウキビとは、後代系統等に茎長の表現型が未知のサトウキビ系統のことであり、茎長が増大する形質を有するか判定する対象となるサトウキビ系統である。次に、抽出したゲノムDNAを、DNAマイクロアレイを作製する際に使用した制限酵素で消化して複数のゲノムDNA断片を調整する。次に、得られたゲノムDNA断片と、DNAマイクロアレイを作製する際に使用したアダプターとを連結する。次に、両末端にアダプターが付加されたゲノムDNA断片を、DNAマイクロアレイを作製する際に使用したプライマーを用いて増幅する。これにより、DNAマイクロアレイを作製する際の工程1dで増幅したゲノムDNA断片に対応する、供試サトウキビ由来のゲノムDNA断片を増幅することができる。この工程においては、アダプターが付加されたゲノムDNA断片のうち、所定のゲノムDNA断片を選択的に増幅してもよい。例えば、複数の制限酵素に対応する複数のアダプターを使用した場合には、特定のアダプターが付加されたゲノムDNA断片を選択的に増幅することができる。また、複数の制限酵素でゲノムDNAを消化した場合、得られたゲノムDNA断片のうち、所定の制限酵素に対応する突出末端を有するゲノムDNA断片のみにアダプターを付加することで、アダプターが付加されたゲノムDNA断片を選択的に増幅することができる。このように、所定のゲノムDNA断片を選択的に増幅することで濃縮することができる。次に、増幅したゲノムDNA断片に標識を付加する。標識としては、従来公知の如何なる物質を使用しても良い。標識としては、例えば蛍光分子、色素分子、放射性分子等を使用することができる。なお、本工程は、ゲノムDNA断片を増幅する工程において標識を有するヌクレオチドを用いることで省略することができる。上記工程において標識を有するヌクレオチドを用いてゲノムDNA断片を増幅することで、増幅されたDNA断片が標識化されるためである。次に、標識を有するゲノムDNA断片を所定の条件下でDNAマイクロアレイに接触させ、DNAマイクロアレイに固定されたプローブと標識を有するゲノムDNA断片とをハイブリダイズさせる。このとき、ハイブリダイズさせる際には高いストリンジェンシー条件とすることが好ましい。このような高いストリンジェンシー条件とすることによって、供試サトウキビにサトウキビ茎長関連マーカーが存在しているか否かを、より高精度に判定することができる。なお、ストリンジェンシー条件は、反応温度及び塩濃度で調節することができる。すなわち、より高温とすることでより高いストリンジェンシー条件となり、またより低い塩濃度でより高いストリンジェンシー条件となる。例えば、50~75塩基長のプローブを使用する場合、ハイブリダイゼーション条件としては、40~44°C、021SDS、6×SSCの条件とすることでより高いストリンジェンシー条件とすることができる。また、プローブと標識を有するゲノムDNA断片とのハイブリダイズは、標識に基づいて検出することができる。すなわち、上述した標識を有するゲノムDNA断片とプローブのハイブリダイズ反応の後、未反応のゲノムDNA断片等を洗浄し、その後、プローブに対して特異的にハイブリダイズしたゲノムDNA断片の標識を観察する。例えば、標識が蛍光物質である場合にはその蛍光波長を検出し、標識が色素分子であればその色素波長を検出する。より具体的には、通常のDNAマイクロアレイ解析に使用している、蛍光検出装置やイメージアナライザー等の装置を使用することができる。以上のように、上述したDNAマイクロアレイを使用することにより、供試サトウキビが上述したサトウキビ茎長関連マーカーを有するか否か判断することができる。特に、上述した方法では、供試サトウキビを実際の茎長が測定可能な程度まで成長させる必要はなく、例えば後代系統の種子や当該種子を発芽させた幼苗を使用することができる。したがって、サトウキビ茎長関連マーカーを利用することによって、供試サトウキビを生育させるための圃場やその他、生育のためのコストを大幅に削減することができる。特に、サトウキビの新品種作出に際して、先ず、交配により数万種類の交配種を作製した後、実生選抜に先立って若しくは実生選抜に代えて、サトウキビ茎長関連マーカーを利用した判断を行うことが好ましい。これにより、実際の圃場において、優良な系統を栽培する数を大幅に削減することができ、サトウキビの新品種作出に係る手間やコストを大幅に抑制することができる。以下、実施例により本発明をより詳細に説明するが、本発明の技術的範囲は以下の実施例に限定されるものではない。1.DNAマイクロアレイ用プローブの作製材料サトウキビ品種:NiF8、Ni9、US56158、POJ2878、Q165、R570、Co290及びB3439、サトウキビ近縁野生種:GlagahKloet、Chunee、NatalUba及びRobustum9、並びにエリアンサス:IJ76349及びJW630を用いた。制限酵素処理これらサトウキビ品種、サトウキビ近縁野生種及びエリアンサスからそれぞれゲノムDNAを、DNeasyPlantMiniKitQiagen社製を用いて抽出した。ゲノムDNAを制限酵素PstIで37°C、2時間処理後、制限酵素BstNIを添加、60°C、2時間処理した。アダプターライゲーションで処理したゲノムDNA断片にPstI配列アダプターとT4DNALigaseを加え、16°C、一昼夜処理した。これにより、で処理したゲノムDNA断片のうち、両末端にPstI認識配列を有するゲノムDNA断片に対して選択的にアダプターを付加した。PCR増幅で得られたアダプターを有するゲノムDNA断片にPstI配列アダプター認識プライマーとTaqpolymeraseを加え、PCRでゲノムDNA断片を増幅した。ゲノムシークエンス取得においてPCR増幅したゲノムDNA断片についてサンガー法により塩基配列を決定した。また、ゲノムデータベースGramene:httpwwwgrameneorgに格納されたソルガム全ゲノム配列情報から、PstI認識配列により挟み込まれる塩基配列情報を取得した。プローブ設計及びDNAマイクロアレイの作製のゲノムシークエンス情報をもとに50~75bpのプローブを設計した。設計したプローブの塩基配列情報をもとに、これらプローブを有するDNAマイクロアレイを作製した。2.DNAマイクロアレイを用いたシグナルデータの取得材料サトウキビ品種系統:NiF8及びNi9、並びに、交配後代191系統を用いた。制限酵素処理これらNiF8及びNi9、並びに191系統の後代系統からそれぞれゲノムDNAを、DNeasyPlantMiniKitQiagen社製を用いて抽出した。ゲノムDNAを制限酵素PstIで37°C、2時間処理後、制限酵素BstNIを添加、60°C、2時間処理した。アダプターライゲーションで処理したゲノムDNA断片にPstI配列アダプターとT4DNALigaseを加え、16°C、一昼夜処理した。これにより、で処理したゲノムDNA断片のうち、両末端にPstI認識配列を有するゲノムDNA断片に対して選択的にアダプターを付加した。PCR増幅で得られたアダプターを有するゲノムDNA断片にPstI配列アダプター認識プライマーとTaqpolymeraseを加え、PCRでゲノムDNA断片を増幅した。ラベル化上述したで得られたPCR増幅断片をカラムで精製後、Cy3labeled9mersを加え、98°C、10分間処理後、氷上で10分間静置した。その後、Klenowを加え37°C、2時間処理した。そして、エタノール沈殿によりラベル化サンプルを調整した。ハイブリシグナル検出のラベル化サンプルを用い、NimbleGenArrayUsersGuideに従い、上記1.で作製したDNAマイクロアレイを用いてハイブリダイズを行い、ラベルに基づくシグナルを検出した。3.サトウキビ茎長のQTLの同定及びマーカーの開発遺伝地図データシート作成上記2.にて検出したサトウキビ品種NiF8、Ni9及びこれらの交雑後代系統191系統のシグナルデータから、3004個のマーカーとなりうる遺伝子型データを取得した。この遺伝子型データを元にして、遺伝地図作成ソフトウェアAntMapIwataHNinomiyaSAntMapconstructinggeneticlinkagemapsusinganantcolonyoptimizationalgorithmBreedSci56371378を使用し、遺伝距離計算式Kosambiにより染色体におけるマーカーの位置情報を算出した。さらに、取得したマーカーの位置情報をもとに、MapmakerEXPver30AWhiteheadInstituteforBiomedicalResearchTechnicalReportThirdEditionJanuary1993により遺伝地図データシートを作成した。茎長データの取得供試したサトウキビ品種:NiF8及びNi9、並びに、交配後代191系統を、1反復13個体、2反復栽培し、各反復5個体植え付け後、98日目について発芽位置から1葉最上展開葉肥厚帯までを計測し、2反復の平均値を茎長データとして使用した。算出された茎長を図3にまとめた。量的形質QuantitativetraitlociQTLの解析上記で得られた遺伝地図データシート及び上記で得られた茎長データを元にして、遺伝解析ソフトQTLCartographerWangSCJBastenandZBZengWindowsQTLCartographer25DepartmentofStatisticsNorthCarolinaStateUniversityRaleighNCを使用し、CompositeintervalmappingCIM法によりQTL解析を行った。このときLODの閾値を25とした。その結果、図4~6に示すように、サトウキビ品種:NiF8の第18連鎖群に存在するマーカーN826961からN825180の区間内、第23連鎖群に存在するマーカーN827910からN811685の区間内、及び第46連鎖群に存在するマーカーN804812からN826565の区間内に、LODの閾値を超えるピークが得られた。得られたピークは表4に示すように特定することができ、当該ピークの位置に茎長を増大させる機能を有する原因遺伝子群が存在することが示唆された。そして、図4~6に示すように、当該ピークの近傍に位置するマーカーは、茎長を増大させる機能を有する原因遺伝子群と連鎖して遺伝するためサトウキビ茎長関連マーカーとして使用できることが示された。すなわち、図4~6に示した29種類のマーカーは、サトウキビ茎長関連マーカーとして使用できることが明らかとなった。なお、上記2.におけるシグナル検出の一例として、NiF8及びNi9、並びに16系統の後代系統F11~F116における、第18連鎖群に存在するマーカーN826961からN825180に含まれる13種類のマーカーのシグナル値を表5に示し、なかでもN828509については当該シグナル値を図7に示した。茎長が比較的に大であるNiF8や後代系統F12、F14等については、これら13種類のマーカーのシグナル値が非常に高いことが示された。これらの結果からも、第18連鎖群に存在するマーカーN826961からN825180に含まれる13種類のマーカーは、サトウキビ茎長関連マーカーとして使用できることが明らかとなった。同様に、NiF8及びNi9、並びに16の後代系統F11~F116における、第23連鎖群に存在するマーカーN827910からN811685に含まれる9種類のマーカーのシグナル値を表6に示し、なかでもN827910については当該シグナル値を図8に示した。茎長が比較的に大であるNiF8や後代系統F11、F12等については、これら9種類のマーカーのシグナル値が非常に高いことが示された。これらの結果からも、第23連鎖群に存在するマーカーN827910からN811685に含まれる9種類のマーカーは、サトウキビ茎長関連マーカーとして使用できることが明らかとなった。同様に、NiF8及びNi9、並びに16系統の後代系統F11~F116における、第46連鎖群に存在するマーカーN804812からN826565に含まれる7種類のマーカーのシグナル値を表7に示し、なかでもN804812については当該シグナル値を図9に示した。茎長が比較的に大であるNiF8や後代系統F11、F12等については、これら7種類のマーカーのシグナル値が非常に高いことが示された。これらの結果からも、第46連鎖群に存在するマーカーN804812からN826565に含まれる7種類のマーカーは、サトウキビ茎長関連マーカーとして使用できることが明らかとなった。