少なくとも一つの分散形態のセルフアッセンブリータンパク質、及びセルフアッセンブリータンパク質のための少なくとも一つの分散剤を水相中に含む安定な水性タンパク質分散系であって、前記分散剤が両親媒性タンパク質から選択されるポリマー分散剤であるか、又は両親媒性ペプチド断片及び両親媒性有機オリゴマーから選択されるオリゴマー分散剤である、前記分散系。セルフアッセンブリータンパク質が、ミクロビーズを形成するか又は本質的に折り畳まれていないタンパク質、より具体的にはクモ絹タンパク質等の絹タンパク質若しくは昆虫タンパク質、又はこれらのタンパク質の少なくとも一つに由来し、かつ少なくとも約60の配列同一性を有するセルフアッセンブリーアナログである、請求項1に記載の安定な水性分散系。セルフアッセンブリータンパク質が、a配列番号4のアミノ酸配列を含むR16タンパク質;b配列番号6のアミノ酸配列を含むS16タンパク質;cこれらのタンパク質に由来し、かつ配列番号4又は配列番号6に対し少なくとも約60の配列同一性を有する紡糸可能なアナログタンパク質から選択される、請求項1又は2に記載の安定な水性分散系。両親媒性ペプチド断片が、前駆タンパク質の断片を含む、請求項1~3のいずれか1項に記載の安定な水性分散系。ポリマー分散剤がアルブミン、より具体的にはウシ血清アルブミンBSA又は無脂肪ウシ血清アルブミンffBSAである、請求項1~4のいずれか1項に記載の安定な水性分散系。前駆タンパク質がアルブミン、より具体的にはウシ血清アルブミンBSA又は無脂肪ウシ血清アルブミンffBSAである、請求項4に記載の安定な水性分散系。両親媒性ペプチド断片が、請求項2又は3に記載のセルフアッセンブリータンパク質のペプチド断片である、請求項4に記載の安定な水性分散系。両親媒性有機オリゴマーが、エーテル構造単位を含み、かつ疎水性側基を有する少なくとも一つの疎水性エーテルオリゴマーブロック、及び親水性側基を有する少なくとも一つの親水性エーテルオリゴマーブロックを含むブロックコオリゴマーである、請求項1に記載の安定な水性分散系。少なくとも一つのセルフアッセンブリータンパク質を、安定な分散系の総重量を基準として重量で1~40、好適には重量で5~20の割合で含み、任意に重量で001~50、好適には重量で01~10の少なくとも一つのさらなる製剤補助剤又は加工補助剤を共に含む、請求項1~8のいずれか1項に記載の安定な水性分散系。セルフアッセンブリータンパク質及び分散剤を、011~10001の相対重量割合で含む、請求項1~9のいずれか1項に記載の安定な水性分散系。請求項1~10のいずれか1項に記載の、少なくとも一つのセルフアッセンブリータンパク質の安定な水性分散系を生産するためのプロセスであって、可溶化剤カオトロープを含む水性媒体にセルフアッセンブリータンパク質を溶解すること、及び生じた溶液を分散剤の存在下で透析又は限外濾過することにより、セルフアッセンブリータンパク質から可溶化剤カオトロープを除去することを含む、前記プロセス。セルフアッセンブリータンパク質及びポリマー分散剤の混合物がカオトロープを含む水性媒体に溶解され、カオトロープが、より具体的にはカオトロープを含まない透析媒体に対する透析によって、セルフアッセンブリータンパク質から除去され、安定な分散系を形成する、請求項11に記載のプロセス。セルフアッセンブリータンパク質がカオトロープを含む水性媒体に溶解され、カオトロープがセルフアッセンブリータンパク質から除去され、カオトロープの除去前又は除去中に両親媒性ペプチド断片又は合成の両親媒性オリゴマーを添加することにより安定な分散系を形成する、請求項11に記載のプロセス。カオトロープの除去が透析又は限外濾過又は沈降によりなされる、請求項11~13のいずれか1項に記載のプロセス。カオトロープの除去が、少なくとも一つの両親媒性ペプチド断片又は少なくとも一つの合成両親媒性オリゴマーを含む透析媒体透析バッファーに対する透析によってなされる、請求項13に記載のプロセス。カオトロープを含む水性媒体が、緩衝された水性媒体と交換される、請求項11~15のいずれか1項に記載のプロセス。緩衝された媒体が約10~12のpHを有する、請求項16に記載のプロセス。透析容量が、カオトロープ及びセルフアッセンブリータンパク質を含む透析される水性媒体の容量に対して、少なくとも100倍である、請求項14~17のいずれか1項に記載のプロセス。セルフアッセンブリータンパク質のエレクトロスピニングのためのプロセスであって、請求項1~10のいずれか1項に記載の、又は請求項11~18のいずれか1項にしたがって得られた安定な水性分散系のエレクトロスピニングを含む、前記プロセス。少なくとも一つのセルフアッセンブリータンパク質を含む繊維シート体又は繊維を生産するためのプロセスであって、請求項1~10のいずれか1項に記載の、又は請求項11~18のいずれか1項にしたがって得られた水性分散系をエレクトロスピニングして、繊維シート体を形成することを含む、前記プロセス。紡糸される分散系が、安定な分散系の総重量を基準として、重量で1~40、好適には重量で5~20の割合でセルフアッセンブリータンパク質を含む、請求項19又は20のいずれかに記載のプロセス。紡糸前に分散系が、a分散系に可溶な又は分散可能な、有機/合成バイオポリマー等の粘度調整剤;bキャリア形成性ポリマー;c薬理学、農業化学、皮膚化粧品又は毛髪化粧品活性成分;から選択される少なくとも一つのさらなる添加剤と混合される、請求項19~21のいずれか1項に記載のプロセス。表面、より具体的には不織布、繊維及び発泡体をコーティング、より具体的にはスプレー又は浸漬コーティングするための、請求項1~10のいずれか1項に記載の安定な水性分散系の使用。医療部門、より具体的には創傷接触材料、縫合糸、医療デバイス、インプラント、組織エンジニアリングにおける製品のための、請求項19~22のいずれか1項にしたがって得られた材料の使用。衛生用品及び生地の製造における、請求項19~22のいずれか1項にしたがって得られた材料の使用。請求項20~22のいずれか1項に記載のプロセスによって得られた繊維又は繊維シート体。疎水性が高いタンパク質、例えばR16タンパク質等の水への乏しい可溶性最大で約1のために、本発明の目的は、前記タンパク質が紡糸されるために液相において比較的高濃度で安定化される、紡糸可能な系を開発することである。透析中の水溶液でのタンパク質の沈殿を防ぐという課題に対し、本発明によって提供される第一の解決策は、その構造中に疎水性部分も含む親水性タンパク質による疎水性タンパク質の安定化を含む。より具体的には、ウシ血清アルブミンBSA、フラクションVがこれらの要求を満たすことが実験的に示された。ウシ血清アルブミンは、血液中の脂肪酸及び脂質の輸送機能を果たす可溶性タンパク質である。BSAは607アミノ酸で構成され、約694kDaの分子量を有する。無脂肪BSAffBSAはBSAの特定の形態であり、脂肪酸の除去によりさらなる疎水性部位が存在する。前記課題に対し、本発明によって提供される第二の解決策は、好適なタンパク質断片ペプチドを用いた疎水性タンパク質の安定化を含む。本発明のタンパク質断片は疎水性配列ドメインと共に親水性配列ドメインを含む。より具体的には、二つのペプチドに基づく系が提供される:aR16タンパク質のタンパク質断片を用いたネイティブなR16タンパク質の安定化bBSAのタンパク質断片を用いたネイティブなR16タンパク質の安定化。安定化用タンパク質断片を製造するための、タンパク質のそれぞれの加水分解性の分裂は、通常の方法によって、例えば80°CのNaOH溶液を用いてなされる。前記課題に対し、本発明によって提供される第三の解決策は、それ自体は既知の化合物であり、例えばWO2010057654に記載されている、好適な合成有機オリゴマーを用いた疎水性タンパク質の安定化を含む。WO2010057654の内容は、参照により明白に明細書に組み込む。これらのオリゴマーもまた、疎水性ドメインと共に親水性ドメインを含み、高濃度の水溶液中において疎水性タンパク質を安定化する。より具体的には、本発明者は、驚くべきことに、前記様々な解決手段の全てが、エレクトロスピニングによって分散系をさらに加工するために十分な時間、高濃度の疎水性タンパク質を安定に保つ安定化された水性タンパク質分散系を提供する事を見出した。疎水性ポリマーのエレクトロスピニングにおいて高濃度の有機溶媒又は有機酸を用いる必要性を除去し、ナノファイバー及び繊維シート体の全体的な生産プロセスを大いに単純化し、かつさらにそのコストを削減するのは、これが初めてである。結果として、本発明に従って実施されるプロセスは環境によりやさしくなぜならこのプロセスは水溶液から紡糸する、繊維の生産中より穏やかであり、かつタンパク質の安定性を改善する。さらに、該プロセスは、より少ない容量を用いるという有利な点も有しており、それゆえに取り扱いにも優れる。タンパク質溶液が濃縮されるので、繊維は高い処理量で、すなわち高い生産性で、水溶液から紡糸され得る。1.一般的な用語の定義両親媒性は親水性及び親油性の両方である物質の化学的特性を意味する。これは、該物質が親水性ドメイン及び疎水性ドメインの両方を有するという事実に基づく。カオトロピックは、例えばバリウム塩、塩酸グアニジン、チオシアン酸グアニジン等のチオシアン酸塩、過塩素酸塩等の、水中の秩序だった水素結合を解く化学物質を示すのに用いられる。水素結合を破壊することにより、カオトロピック物質は水の構造を乱し、エントロピーの増大を引き起こす。アミノ酸の場合には、カオトロピック物質はそれにより疎水的な影響を変化させ、タンパク質を変性させる効果を有する。なぜならタンパク質折り畳みの推進力は疎水性アミノ酸の凝集だからである。分散系は、ほとんどあるいは全く、互いに溶解しないか若しくは化学的に結合しない二以上の化学物質の不均一な混合物である。したがって、水性タンパク質分散系は水性媒体分散媒と固形タンパク質分散相の混合物であり、したがって水性タンパク質懸濁液と呼ぶこともできる。キャリア担体ポリマーは、バイオポリマー及び/若しくはそれらの混合物、あるいは、一以上の合成ポリマーと一以上のバイオポリマーの混合物を意味するものと理解されたい。ここで、前記キャリアポリマーは、製剤化される活性/有益剤若しくは薬剤との非共有結合性の相互作用に関わるか、又は分散又は結晶性の粒子状活性成分を包囲若しくは吸着担持することができる。活性又は有益剤は、農業化学、薬学、化粧品、又は食品及び飼料産業において用途を見出し得る、親水性、親油性、又は両親媒性の特性を有する合成若しくは天然の低分子量物質を意味し、さらに、本発明の繊維シート体に埋め込まれ得るか又は吸着され得る生物活性高分子、例えばペプチド例えば、2~10のアミノ酸残基を有するオリゴペプチド、及び10超、例えば11~100のアミノ酸残基を有するポリペプチド並びに酵素及び単鎖又は二本鎖の核酸分子例えば2~50の核酸残基を有するオリゴヌクレオチド及び50超の核酸残基を有するポリヌクレオチドもまた意味すると理解されたい。用語繊維シート体は、本発明において、個々のポリマー繊維だけでなく、複数のかかる繊維の秩序だった又はランダムな単一若しくは多数層の集合体、例えば繊維ウェブ又は不織布もまた含む。特に示さない限り、ポリマーの分子量の記載は、Mn値又はMw値である。2.特定の実施形態より具体的には、本発明は以下の実施形態を提供する:1.天然で、合成で、又は組み換えで生産された少なくとも一つの分散形態のセルフアッセンブリータンパク質、及びそのセルフアッセンブリータンパク質のための少なくとも一つの分散剤を水相中に含む安定な水性タンパク質分散系であって、前記分散剤が両親媒性タンパク質から選択されるポリマー分散剤であるか、又は両親媒性ペプチド断片及び/若しくは両親媒性有機オリゴマーから選択されるオリゴマー分散剤である、前記分散系。2.セルフアッセンブリータンパク質が、ミクロビーズを形成するか又は本質的に折り畳まれていないタンパク質、より具体的にはクモ絹タンパク質等の絹タンパク質若しくは昆虫タンパク質例えばレシリン、又はこれらのタンパク質の少なくとも一つに由来し、かつ少なくとも元のタンパク質に対して約60の配列同一性を有するセルフアッセンブリーアナログである、実施形態1に記載の安定な水性分散系。3.セルフアッセンブリータンパク質が、a配列番号4のアミノ酸配列を含むR16タンパク質;b配列番号6のアミノ酸配列を含むS16タンパク質;cこれらのタンパク質に由来し、かつ配列番号4又は配列番号6に対し少なくとも約60、例えば約70、80、90、95、96、97、98、又は99の配列同一性を有する紡糸可能なアナログタンパク質例えばオリゴアルギニンブロック120Arg等のオリゴアミノ酸ブロックの挿入又は付加による、から選択される、実施形態1又は2に記載の安定な水性分散系。4.両親媒性ペプチド断片が、前駆タンパク質の断片を含む、実施形態1~3のいずれかに記載の安定な水性分散系。5.ポリマー分散剤がアルブミン、より具体的にはウシ血清アルブミンBSA又は無脂肪ウシ血清アルブミンffBSAである、実施形態1~4のいずれかに記載の安定な水性分散系。6.前駆タンパク質がアルブミン、より具体的にはウシ血清アルブミンBSA又は無脂肪ウシ血清アルブミンffBSAである、実施形態4に記載の安定な水性分散系。7.両親媒性ペプチド断片が、実施形態2又は3に記載のセルフアッセンブリータンパク質のペプチド断片である、実施形態4に記載の安定な水性分散系。8.両親媒性有機オリゴマーが、エーテル構造単位を含み、かつ少なくとも一つの疎水性エーテルオリゴマーブロックより具体的には少なくとも一つの疎水性側鎖を有する、及び少なくとも一つの親水性エーテルオリゴマーブロックより具体的には少なくとも一つの親水性側鎖を有するを含むブロックコオリゴマーである、実施形態1に記載の安定な水性分散系。前記各ブロックは、より具体的には均一であり、すなわち本質的に同一のモノマー構造単位で構成される。9.少なくとも一つのセルフアッセンブリータンパク質を、安定な分散系の総重量を基準として重量で1~40の割合で、より具体的には重量で2~30、3~25、又は5~25含み、任意に重量で001~50、より具体的には重量で005~30、008~20、又は01~10の少なくとも一つのさらなる製剤補助剤若しくは加工補助剤を共に含む、実施形態1~8のいずれかに記載の安定な水性分散系。10.セルフアッセンブリータンパク質及び分散剤を、011~10001、又は021~1005、又は051~102、又は071~105の相対重量割合で含む、実施形態1~9のいずれかに記載の安定な水性分散系。11.実施形態1~10のいずれかに記載の、少なくとも一つのセルフアッセンブリータンパク質の安定な水性分散系を生産するためのプロセスであって、可溶化剤カオトロープを含む水性媒体にセルフアッセンブリータンパク質を溶解すること、及び生じた溶液を分散剤の存在下で透析又は限界濾過することにより、セルフアッセンブリータンパク質から可溶化剤カオトロープを除去することを含む、前記プロセス。12.セルフアッセンブリータンパク質及びポリマー分散剤の混合物がカオトロープを含む水性媒体に溶解され、カオトロープが、より具体的にはカオトロープを含まない透析媒体に対する透析によって、セルフアッセンブリータンパク質から除去され、安定な分散系を形成する、実施形態11に記載のプロセス。13.セルフアッセンブリータンパク質がカオトロープを含む水性媒体に溶解され、カオトロープがセルフアッセンブリータンパク質から除去され、カオトロープの除去前又は除去中に両親媒性ペプチド断片又は合成の両親媒性オリゴマーを添加することにより安定な分散系を形成する、実施形態11に記載のプロセス。14.カオトロープの除去が透析、限外濾過、及び/又は沈降によりなされる、実施形態11~13のいずれかに記載のプロセス。15.カオトロープの除去が、少なくとも一つの両親媒性ペプチド断片又は少なくとも一つの合成両親媒性オリゴマーを含む透析媒体透析バッファーに対する透析によってなされる、実施形態13に記載のプロセス。16.カオトロープを含む水性媒体が、緩衝された水性媒体と交換される、実施形態11~15のいずれか1形態に記載のプロセス。17.緩衝された媒体が約4~12若しくは10~12、又は約115のpHを有する、実施形態16に記載のプロセス。18.透析容量が、カオトロープ及びセルフアッセンブリータンパク質を含む透析される水性媒体の容量に対して、少なくとも100倍、例えば200倍、300倍、500倍、若しくは1000倍、又はそれ以上多い、実施形態14~17のいずれか1形態に記載のプロセス。19.セルフアッセンブリータンパク質のエレクトロスピニングのためのプロセスであって、実施形態1~10のいずれか1形態に記載の、又は実施形態11~18のいずれか1形態にしたがって得られた安定な水性分散系のエレクトロスピニングを含む、前記プロセス。20.少なくとも一つのセルフアッセンブリータンパク質を含む繊維シート体又は繊維を生産するためのプロセスであって、実施形態1~10のいずれか1項に記載の、又は実施形態11~18のいずれか1項にしたがって得られた水性分散系をエレクトロスピニングして繊維シート体を形成することを含む、前記プロセス。21.紡糸される分散系が、安定な分散系の総重量を基準として、重量で1~40、より具体的には重量で2~30、3~25、又は5~20の割合でセルフアッセンブリータンパク質を含む、実施形態19又は20のいずれかに記載のプロセス。22.紡糸前に分散系が、a分散系に可溶な又は分散可能な、有機/合成バイオポリマー等の粘度調整剤;bキャリア形成性ポリマー;c薬理学、農業化学、皮膚化粧品又は毛髪化粧品活性成分;d薬剤、創傷治癒促進剤;e抗微生物剤、抗細菌剤、又は抗ウイルス剤;から選択される少なくとも一つのさらなる添加剤と混合される、実施形態19~21のいずれか1形態に記載のプロセス。23.表面、より具体的には不織布、繊維及び発泡体のコーティング、より具体的にはスプレー若しくは浸漬コーティング、又はシート形態のコーティングのための、実施形態1~10のいずれか1形態に記載の安定な水性分散系の使用。24.医療部門、より具体的には創傷接触材料、縫合糸、医療デバイス、インプラント、組織工学における製品のための、実施形態19~22のいずれか1形態にしたがって得られた材料の使用。25.衛生物品及び繊維製品の製造における、実施形態19~22のいずれか1形態にしたがって得られた材料の使用。26.実施形態20~22のいずれか1形態に記載のプロセスによって得られた繊維又は繊維シート体。3.本発明のさらなる具体例iセルフアッセンブリータンパク質特に有用なセルフアッセンブリータンパク質は、特に絹タンパク質である。本発明の目的上絹タンパク質は、高度の反復アミノ酸配列を含み、動物中に液体形態で貯蔵され、その分泌物がせん断又は紡糸により繊維を生ずる絹タンパク質であるCraigCLEvolutionofarthropodsilksAnnuRevEntomol4223167。特に好適なこの種類のタンパク質は、もともとクモから、特にクモの大瓶状腺majorampullateglandから単離されたクモの絹タンパク質、例えばニワオニグモAraneusdiadematusの大瓶状腺から単離されたADF3及びADF4である。同様に好適なタンパク質は、天然タンパク質であるか、又は天然の絹タンパク質に由来し、かつ遺伝子工学的方法を用いて原核生物若しくは真核生物の発現系において異種的に生産された合成タンパク質である。原核発現の生物の限定するものではない例として、大腸菌Escherichiacoli、枯草菌Bacillussubtilis、バチルスメガテリウムBacillusmegaterium、コリネバクテリウムグルタミカムCorynebacteriumglutamicum等が挙げられる。真核発現の生物の限定するものではない例として、酵母、例えばサッカロマイセスセレビシアSaccharomycescerevisiae、ピキアパストリスPichiapastoris等、糸状菌、例えばクロコウジカビAspergillusniger、コウジカビAspergillusoryzae、アスペルギルスニデュランスAspergillusnidulans、トリコデルマリーゼイTrichodermareesei、アクレモニウムクリソゲナムAcremoniumchrysogenum等、哺乳類細胞、例えばHela細胞、COS細胞、CHO細胞等、昆虫細胞、例えばSf9細胞、MEL細胞等が挙げられる。天然の絹タンパク質の反復単位に基づく合成タンパク質もまた好適である。合成の反復絹タンパク質配列に加え、合成タンパク質はさらに一以上の天然の非反復絹タンパク質配列を含み得る。合成クモ絹タンパク質のうち、天然のクモ絹タンパク質の反復単位に基づく合成クモ絹タンパク質を、紡糸プロセスによる活性剤の製剤化のために用いることもまた可能である。合成の反復クモ絹タンパク質配列に加え、合成タンパク質はさらに一以上の天然の非反復のクモ絹タンパク質配列を含み得る。合成クモ絹タンパク質の中で、配列番号2のいわゆるC16タンパク質1360413612、並びにこの配列の機能的等価物、機能的誘導体、及び塩WO2007082936も参照が言及されるべきである。さらに、レシリン等の昆虫の構造タンパク質の配列と結合された、天然の絹タンパク質の反復単位に基づく合成タンパク質も好適である。絹タンパク質及びレシリンから形成されたこれらの結合タンパク質の中で、R16及びS16タンパク質は、特に言及されるべきである。これらのタンパク質は配列番号4及び配列番号6で示されるポリペプチド配列を有するWO2008155304を参照。配列番号2、4、及び6で示されるポリペプチド配列に加え、特にこれら配列の機能的等価物、機能的誘導体、及び塩もまた好適である。本明細書における機能的等価物は特に、前記アミノ酸配列の少なくとも一つの配列位置に、具体的に述べたもの以外のアミノ酸を一つ有するにもかかわらず、充填効果物質としての特性を有する変異体を意味する。したがって機能的等価物は、一以上のアミノ酸の付加、置換、欠失及び/又は反転によって得られる変異体を含み、かかる変更はそれにより本発明に従う特性プロフィールpropertyprofileを有する変異体が生じる限りいかなる配列位置でも起こり得る。機能的等価は、特に変異体と非修飾ポリペプチドとの間で反応パターンに質的一致がある場合にも存在する。前記意味において、機能的等価物は前記ポリペプチドの前駆物質並びに、前記ポリペプチドの機能的誘導体及び塩も含む。前駆物質は望ましい生物活性を有するか、又は有していないポリペプチドの天然又は合成の前駆物質である。好適なアミノ酸置換の例は、以下の表から明らかである。用語塩はカルボキシル基の塩だけでなく、本発明のタンパク質分子のアミノ基の酸付加塩もまた意味すると理解されたい。カルボキシル基の塩は通常の方法で得ることができ、無機塩、例えばナトリウム、カルシウム、アンモニウム、鉄及び亜鉛塩、並びに有機塩基、例えばトリエタノールアミン等のアミン、アルギニン、リジン、ピペリジン等の塩もまた含む。酸付加塩、例えば塩酸又は硫酸等の無機酸の塩、並びに例えば酢酸及びシュウ酸等の有機酸の塩もまた、本発明の範囲の一部を構成する。本発明のポリペプチドの機能的誘導体もまた、機能的アミノ酸側鎖において、又はそれらのN-若しくはC-末端において、既知の技術により調製可能である。かかる誘導体は例えば、カルボン酸基の脂肪族エステル、アンモニア又は一級若しくは二級アミンとの反応により得られ得るカルボン酸基のアミド、アシル基との反応により調製される遊離アミノ基のN-アシル誘導体、又はアシル基との反応により調製される遊離ヒドロキシル基のO-アシル誘導体を含む。本発明に従う機能的等価物には、本明細書で具体的に開示されるタンパク質/ポリペプチドの相同体もまた含まれる。これらは少なくとも、具体的に開示されたアミノ酸配列の一つに対して、少なくとも60、例えば70、80又は85、例えば90、91、92、93、94、95、96、97、98又は99の同一性を有する。二つの配列の同一性は、特に各場合の全長配列における残基の同一性、特に以下のパラメーターを設定したVectorNTISuite71VectorNTIAdvance1030InvitrogenCorp又はClustal法を用いたInformaxのソフトウェア1511を用いた比較によって計算された同一性を意味する。ii分散剤好適な水性分散系は、特にポリマー又はオリゴマー分散剤を用いて製造される。1ポリマー分散剤は、より具体的にはグロブリン、特にアルブミン、より具体的にはウシ血清アルブミンBSA及びその無脂肪調製物ffBSAから選択され、かつ、それらは商業的に利用可能である。アルブミンは約66000Daのモル質量を有し、584~590のアミノ酸で構成される。そのシステインの割合が高いために、アルブミンは比較的高い硫黄含量を有する。アルブミンは水に可溶性であり、その水に対する結合能は約18mlgである。その等電点はpH46である。アルブミンは両性電解質であり、すなわちアニオン及びカチオンの両方に可逆的に結合し得る。2オリゴマー分散剤は、より具体的には前記天然及び合成絹タンパク質、並びにより具体的にはR16及びS16タンパク質の両親媒性ペプチド断片であり;並びに前記グロブリン、より具体的にはアルブミン、特にBSA又はffBSAの両親媒性ペプチド断片でもある。この種の断片はもとのタンパク質の制御された分裂によって得られ得る。制御された分裂のために、例えば、好適な量のタンパク質を試験管に秤量し、02MNaOH溶液と混合し得る。試験管をしっかりと密封し、混合物を内部温度が約80°Cになるまで水浴で加熱する。このようにして得た混合物を勢いよく攪拌する。しばらくした後、タンパク質はNaOH溶液に溶解し始める。タンパク質が溶解したらすぐに、サンプルを水浴から取り上げ、冷却し、分析する。この方法で得られ得るタンパク質加水分解物は、約500~5000、例えば1000~3000又は600~4000の分子量を有するペプチド断片の混合物で構成され、これはマススペクトロメトリー例えばMaldiToFによって簡単に検証し得る。3オリゴマー分散剤は、より具体的には、WO2010057654に従って得られ得る、エーテル構造単位を含み、かつ特に、少なくとも一つの疎水性側鎖を有する少なくとも一つの疎水性エーテルオリゴマーブロック、及び特に、少なくとも一つの親水性側鎖を有する少なくとも一つの親水性エーテルオリゴマーブロックを含むブロックコオリゴマーである。より具体的には、前記ブロックはそれぞれ、均一な構成を有し、すなわち、本質的に同一のモノマー構造単位で構成される。ブロックコオリゴマーの特定の群は、以下の一般式Aで表され得る。ここで、n及びmは同じであるか又は異なっており、それぞれ1~20の整数値、より具体的には3~10、例えば4、5、6、7、8、又は9であり、ブロック式中、blockで示す1及び2は異なっており、ブロック1及び2のうち一つは親水性側鎖を有し、他方は疎水性側鎖を有し、R1はH又は直鎖若しくは分岐C1C6アルキル、アリール、又は直鎖若しくは分岐C1C6アルキルアリールであり、ここでアリールは任意に置換され、かつより具体的には直鎖若しくは分岐C1C4アルキル又は直鎖若しくは分岐C1C4アルキルフェニルであり;側鎖ラジカルR2及びR3は異なっており、疎水性ラジカル、より具体的には直鎖若しくは分岐C1C6アルキル、アリール、又は直鎖若しくは分岐C1C6アルキルアリールから選択され;又はH及び親水性ラジカル、例えばpCOOH、pCOOXから選択され、ここでXはH又は金属カチオン、例えばアルカリ金属カチオン、より具体的にはNa若しくはKであり、かつpは1、2、又は3等の整数であり;かつ、ブロック1及び2において、側鎖ラジカルR2及びR3はそれぞれ同じであるか、又はブロック1及び/又は2において側鎖ラジカルR2及び/又はR3はそれぞれ異なってよく、親水性又は疎水性ブロック中に少なくとも二つの異なる親水性又は疎水性サブブロックをそれぞれ形成し、ここで各サブブロックは少なくとも2~5の同一の側鎖ラジカルを有し;並びにR4はH又はC1C6アルキル、より具体的にはHである。C1C6アルキルの例として、メチル、エチル、プロピル、1-メチルエチル、ブチル、1-メチルプロピル、2-メチルプロピル、11-ジメチルエチル、ペンチル、1-メチルブチル、2-メチルブチル、3メチルブチル、22-ジメチルプロピル、1-エチルプロピル、ヘキシル、11-ジメチルプロピル、12-ジメチルプロピル、1-メチルペンチル、2-メチルペンチル、3メチルペンチル、4-メチルペンチル、11-ジメチルブチル、12-ジメチルブチル、13-ジメチルブチル、22-ジメチルブチル、23-ジメチルブチル、33-ジメチルブチル、1-エチルブチル、2-エチルブチル、112-トリメチルプロピル、122-トリメチルプロピル、1-エチル-1-メチルプロピル及び1-エチル-2-メチルプロピルが挙げられる。アリールは、より具体的にはナフチル又はフェニルである。C1C6アルキルアリールは、より具体的には、前記C1C6アルキルラジカル、より具体的には非分岐C1C6アルキルラジカルの、アリール特にフェニル置換アナログである。アリール置換基はより具体的には前記定義に従うC1C4アルキルラジカルである。かかるオリゴマーの好適な例として、以下の化学式1~5の化合物を挙げることができる。iii粘度増加剤本発明に従う安定化された水性タンパク質分散系をエレクトロスピニングにおいてよりよく加工するには、この分散系に粘度増加剤を混合することが有利であり得る。原理的には、水性媒体中の安定化されたタンパク質溶液/分散系は、前記目的に有用であると当業者に知られるあらゆる水溶性ポリマーと混合され得る。好適なポリマーは、より具体的には:ポリビニルアルコール、ポリビニルホルムアミド、ポリビニルアミン、ポリカルボン酸ポリアクリル酸、ポリメタクリル酸、ポリアクリルアミド、ポリイタコン酸、ポリ2-ヒドロキシエチルアクリレート、ポリN-イソプロピルアクリルアミド、ポリメタクリルアミド、ポリアルキレンオキシド、例えばポリエチレンオキシド;ポリ-N-ビニルピロリドン;ヒドロキシメチルセルロース;ヒドロキシエチルセルロース;ヒドロキシプロピルセルロース;カルボキシメチルセルロース;アルギン酸塩;コラーゲン;ゼラチン、ポリエチレンイミン、ポリスチレンスルホン酸;前記ポリマーの2以上の組み合わせ;前記ポリマーを構成するモノマー単位を一以上含むコポリマー、前記ポリマーを構成するモノマー単位を一以上含むグラフトコポリマーである。本発明の特定の一実施形態では、水溶性ポリマーは、ポリエチレンオキシド、ポリビニルアルコール、ポリビニルホルムアミド、ポリビニルアミン、及びポリ-N-ビニルピロリドンから選択される。本発明で用いられるポリマーのモル質量は、広い範囲、例えば500~2000000又は1000~1000000又は10000~500000の間で変更され得る。前記水溶性ポリマーは商業的に利用可能であり、及び/又は当業者に知られる方法によって得られ得る。本発明のさらなる実施形態では、本発明のプロセスにおいて用いられるタンパク質溶液又は分散系は、前記定義に従う少なくとも一つの水溶性ポリマーを、溶液/分散系の全固形分を基準として、重量で001~40、例えば重量で05~20又は重量で2~15含む。溶液又は分散系に存在する水溶性ポリマーに対するタンパク質の重量比は、用いられるポリマーに依存する。例えば、タンパク質及び用いられる水溶性ポリマーは、約3001~約15、例えば約1001~約12、又は約201~約11の重量比で用いられ得る。ivキャリア形成性ポリマー好適な合成ポリマーとして、例えば、芳香族ビニル化合物のホモ及びコポリマー、アクリル酸アルキルのホモ及びコポリマー、メタクリル酸アルキルのホモ及びコポリマー、αオレフィンのホモ及びコポリマー、脂肪族ジエンのホモ及びコポリマー、ハロゲン化ビニルのホモ及びコポリマー、酢酸ビニルのホモ及びコポリマー、アクリロニトリルのホモ及びコポリマー、ウレタンのホモ及びコポリマー、ビニルアミドのホモ及びコポリマー、並びに前記ポリマーを構成するモノマー単位の二以上で構成されるコポリマーが挙げられる。有用なキャリアポリマーとして、より具体的には以下のモノマーに基づくポリマーが挙げられる:アクリルアミド、アジピン酸、メタクリル酸アリル、αメチルスチレン、ブタジエン、ブタンジオール、ジメタクリル酸ブタンジオール、ブタンジオールジビニルエーテル、ジメタクリル酸ブタンジオール、モノアクリル酸ブタンジオール、モノメタクリル酸ブタンジオール、ブタンジオールモノビニルエーテル、アクリル酸ブチル、メタクリル酸ブチル、シクロヘキシルビニルエーテル、ジエチレングリコールジビニルエーテル、ジエチレングリコールモノビニルエーテル、アクリル酸エチル、アクリル酸エチルジグリコール、エチレン、エチレングリコールブチルビニルエーテル、ジメタクリル酸エチレングリコール、エチレングリコールジビニルエーテル、アクリル酸エチルヘキシル、メタクリル酸エチルヘキシル、メタクリル酸エチル、エチルビニルエーテル、メタクリル酸グリシジル、ヘキサンジオールジビニルエーテル、ヘキサンジオールモノビニルエーテル、イソブテン、アクリル酸イソブチル、メタクリル酸イソブチル、イソプレン、イソプロピルアクリルアミド、アクリル酸メチル、メチレンビスアクリルアミド、メタクリル酸メチル、メチルビニルエーテル、n-ブチルビニルエーテル、N-メチル―N-ビニルアセタミド、N-ビニルカプロラクタム、N-ビニルイミダゾール、N-ビニルピペリドン、N-ビニルピロリドン、オクタデシルビニルエーテル、アクリル酸フェノキシエチル、ポリテトラヒドロフラン2ジビニルエーテル、プロピレン、スチレン、テレフタル酸、tert-ブチルアクリルアミド、アクリル酸tert-ブチル、メタクリル酸tert-ブチル、テトラエチレングリコールジビニルエーテル、アクリル酸トリエチレングリコールジメチル、トリエチレングリコールジビニルエーテル、トリエチレングリコールジビニルメチルエーテル、トリメタクリル酸トリメチロールプロパン、トリメチロールプロパントリビニルエーテル、ビニル2-エチルヘキシルエーテル、4-tert-ブチル安息香酸ビニル、酢酸ビニル、塩化ビニル、ビニルドデシルエーテル、塩化ビニリデン、ビニルイソブチルエーテル、ビニルイソプロピルエーテル、ビニルプロピルエーテル及びビニルtert-ブチルエーテル。用語合成ポリマーはホモポリマー及びコポリマーの両方を含む。コポリマーとして、ランダムなものだけでなく、交互系、ブロックコポリマー、又はグラフトコポリマーもまた利用可能である。用語コポリマーは、二以上の異なるモノマーで構成されるポリマーを含み、ここで、少なくとも一つのモノマーのポリマー鎖中への組み込みは、例えばステレオブロックコポリマーの場合と同じように、様々な方法で実施され得る。ホモ及びコポリマーの混合物を用いることもまた可能である。ホモ及びコポリマーは互いに混和性であってもなくても良い。以下のポリマーが好適なものとして挙げられる:ポリビニルエーテル、例えばポリベンジルオキシエチレン、ポリビニルアセタール、ポリビニルエステル、例えばポリ酢酸ビニル、ポリオキシテトラメチレン、ポリアミド、ポリカーボネート、ポリエステル、ポリシロキサン、ポリウレタン、ポリアクリルアミド、例えばポリN-イソプロピルアクリルアミド、ポリメタクリルアミド、ポリヒドロキシブチレート、ポリビニルアルコール、アセチル化ポリビニルアルコール、ポリビニルホルムアミド、ポリビニルアミン、ポリカルボン酸ポリアクリル酸、ポリメタクリル酸、ポリアクリルアミド、ポリイタコン酸、ポリアクリル酸2-ヒドロキシエチル、ポリN-イソプロピルアクリルアミド、ポリスルホン酸ポリ2-アクリルアミド-2-メチル-1-プロパンスルホン酸又はPAMPS、ポリメタクリルアミド、ポリアルキレンオキシド、例えばポリエチレンオキシド;ポリ-N-ビニルピロリドン;マレイン酸、ポリエチレンイミン、ポリスチレンスルホン酸、ポリアクリレート、例えばポリアクリル酸フェノキシエチル、ポリアクリル酸メチル、ポリアクリル酸エチル、ポリアクリル酸ドデシル、ポリアクリル酸イソボルニル、ポリアクリル酸nブチル、ポリアクリル酸tブチル、ポリアクリル酸シクロヘキシル、ポリアクリル酸2-エチルヘキシル、ポリアクリル酸ヒドロキシプロピル、ポリメタクリレート、例えばポリメタクリル酸メチル、ポリメタクリル酸nアミル、ポリメタクリル酸n-ブチル、ポリメタクリル酸エチル、ポリメタクリル酸ヒドロキシプロピル、ポリメタクリル酸シクロヘキシル、ポリメタクリル酸2-エチルヘキシル、ポリメタクリル酸ラウリル、ポリメタクリル酸t-ブチル、ポリメタクリル酸ベンジル、ポリメタクリル酸イソボルニル、ポリメタクリル酸グリシジル及びポリメタクリル酸ステアリル、ポリスチレン及びスチレンに基づくコポリマー、例えばマレイン酸無水物とのコポリマー、スチレン-ブタンジエンコポリマー、メタクリル酸メチル-スチレンコポリマー、N-ビニルピロリドンコポリマー、ポリカプロラクトン、ポリカプロラクタム、ポリN-ビニルカプロラクタム。ポリN-ビニルピロリドン、ポリメタクリル酸メチル、アクリレート-スチレンコポリマー、ポリビニルアルコール、ポリ酢酸ビニル、ポリアミド、及びポリエステルは、特に好適である。さらに、合成の生分解性ポリマーを用いることが可能である。生分解性ポリマーとの記載は、DINV54900によって与えられる生分解性の定義を満たす全てのポリマー、より具体的にはコンポスタブルなポリエステルを含み得る。生分解性の一般的な意味は、ポリマー、例えばポリエステルが適切かつ検証可能な間隔で分解するということである。分解は加水分解的に及び/又は酸化的に、かつ、微生物、例えば細菌、酵母、真菌、及び藻類の作用によって主になされ得る。生分解性は、例えばポリエステルをコンポストと混合してしばらく保管することによって定量化され得る。ASTMD5338、ASTMD6400、及びDINV54900に従って、CO2を含まない空気が、堆肥化中の成熟コンポスト、及び既定の温度プログラムに供した成熟コンポストに流される。ここで生分解性は、サンプルの炭素含量から計算されるサンプルによって放出され得る最大のCO2量に対する、サンプルを含まないコンポストによって放出されるCO2を差し引いた後のサンプルによって放出される正味のCO2の比によって、生分解の百分率値として定義される。生分解性ポリエステルは典型的に、堆肥化のほんの数日後に、分解の明確な兆候、例えば真菌カビの増殖、クラッキングひび割れ、及びホーリング穴の生成を示す。生分解性ポリマーの例として、生分解性ポリエステル、例えばポリラクチド、ポリカプロラクトン、ポリアルキレンアジペートテレフタレート、ポリヒドロキシアルカノエートポリヒドロキシブチレート及びポリラクチドグリコシドが挙げられる。特に好適なものとして、生分解性ポリアルキレンアジペートテレフタレート、好適にはポリブチレンアジペートテレフタレートが挙げられる。好適なポリアルキレンアジペートテレフタレートは例えばDE4440858に記載されているそして商業的に利用可能である。例えばBASFのEcoflex登録商標。v活性剤本発明に従って製造された安定化されたタンパク質分散系は、活性若しくは有益剤を含む繊維、又は該繊維を含むシート体、例えばフィルム若しくは繊維不織ウェブを製造するのにもまた用いられ得る。活性又は有益剤を含む該製剤の生産は、本発明の譲受人に譲渡されたWO2010015419により具体的に記載されており、WO2010015419を参照により本明細書に明白に組み込む。潜在的に好適な種類の活性又は有益剤の詳細なリスト及びその代表例の限定するものではないリストもまた、WO2010015419に記載されている。疎水性物質と同様に親水性物質も原理的に製剤化され得る。製剤化可能な物質種の例として:タンパク質、ペプチド、核酸、単糖、二糖、オリゴ糖、多糖、プロテオグリカン、脂質、有機ポリマー、低分子量の合成又は天然の有機物若しくは無機物又は化学元素、例えば銀が挙げられる。該製剤は、より具体的には化粧品、ヒト医薬及び動物医薬だけでなく、作物保護の分野においても有用である。製剤化可能な物質種の、限定するものではない具体的な例として、以下のものが挙げられる:化粧品又は医薬の分野において用いられる色素、脂肪酸、カロテノイド、レチノイド、ビタミン、プロビタミン、抗酸化剤、リポ酸、UV光遮蔽フィルター、過酸化物分解剤;並びにこれらの誘導体及び前駆物質;治療又は診断目的のための医薬活性成分、例えば抗刺激物質、抗炎症剤、血管作動剤、感染阻害剤、麻酔剤、成長促進剤;並びにこれらの誘導体及び前駆物質;創傷治癒促進剤;及び創傷の治癒に正の効果を有する活性剤;抗微生物剤、抗細菌剤、又は抗ウイルス活性剤;抗体、酵素、ペプチド、核酸、成長因子;作物保護活性剤、例えば除草性、殺虫性及び/又は殺菌性効果を有する活性剤。本発明は、以下の限定するものではない詳細な実施形態を参照して、より具体的に記載される:実験:一般的な方法:1.エレクトロスピニングタンパク質溶液を、ノズルに基づくエレクトロスピニング系GimpelIngenieurGesellschaftmbHwwwgimpeldeを用いて紡糸した。用いた高圧電源はEltexのジェネレーター、タイプはKNH34N2A、030kV、DCnegであった。タンパク質溶液を、電源の極につないだカニューレから低圧で電場中に押し出した。電場の結果として生じるタンパク質溶液の静電荷のために、物質の流れは対極の方向へ動き、対極へ向かう途中で凝固し、細い繊維の形で沈着物になった。以下のパラメーター設定を用いた:相対湿度:27、紡糸温度:23°C、電圧:20kV、電極間距離:15-20cm、カニューレ直径:08又は09mm、ポンプ速度:02~05mlh。記載した具体的な実施形態は、さらに回転に基づくエレクトロスピニング系に適用され得る。2.クロマトグラフィーマススペクトロメトリーペプチドのMALDIToFによる測定マトリックスα-シアノ-4-ヒドロキシケイ皮酸CCA、シナピン酸SA前記二つのマトリックスを、TAに溶解した飽和溶液20mgmlとして用いた。TA溶液の組成調製法には、カバー法だけでなく、混合法もまた使用した。混合法では、バッファーに溶解したサンプルを110の比でマトリックスと混合し、標的に規定量を加えた。混合法における希釈倍率は10倍であり、一方でカバー法では希釈は11で行われた。サンプルの高い塩含量は、固相抽出を用いて減少させた。C18コーティングを有するAppliedBiosystemsのジップチップZipTipピペットチップを用いた。ジップチップを、01のトリフルオロ酢酸を含む純粋なアセトリトリル及び01のTFAを含む11アセトニトリル/水で洗浄した。これに続いて01TFAを含む水で二回平衡化した。サンプルを10μlの01TFA溶液に溶解し、ジップチップで繰り返し吸ったり吐いたりピペッティングして、ペプチドを樹脂に結合させた。その後、チップを三回01のTFA及び5のメタノールを含む水溶液で洗浄した。サンプル成分を、18μlのマトリックスを01TFA、50アセトニトリルに溶解したマトリックス溶液でジップチップから溶出させ、直接MALDIToFMS標的にピペットで採取した。3.細胞増殖試験インビトロ試験は繊維芽細胞HDFnInvitrogenNoC0045Cを用いて行った。試験を以下のステップで行った:-6ウェルプレートの培地10FCS及び1ペニシリン/ストレプトマイシンを含むDMEM低グルコース中に、ウェルごとに15000個の細胞を播種、-4時間後細胞はこの時間、全て増殖した、培地を、様々な濃度のタンパク質断片を加えた培地調製については以下を参照されたい1ml/ウェルに変更、-インキュベーターにおいて37°C、5CO2で24時間インキュベーションした後、アラマーブルーInvitrogenorderNoDAL1100;培地1mlにつき100μl;希釈比110に相当を添加しさらに2時間インキュベーターでインキュベーション、-ウェルごとに2×100μl2回測定するための上清をF底の96ウェルプレートに移し、オプティマ蛍光リーダーoptimafluorescencereaderにおける544nmでの測定、-様々な測定時間における測定、及びエクセルプログラムによる評価の繰り返し。増殖試験のためのタンパク質断片の調製:300mgのR16タンパク質又は他のタンパク質を試験管に秤量し、9mlの02MNaOH溶液と混合する。試験管をしっかりと密封する。試験管内の混合物は内部温度が約80°Cになるまで加熱する。ここで水浴の温度は少なくとも85°Cであるべきである。混合物を勢いよく攪拌する。しばらくした後、タンパク質は溶解し、透明な溶液を形成する色が変わる。タンパク質が溶解したらすぐに、サンプルを水浴から取り上げ、冷却する。その後、サンプルは別のどんな熱処理にも付すべきではない。なぜなら、結果として断片がさらに分裂し得、ある状況では完全な分裂が起こり得るからである。冷却後、サンプルを蒸留水5Lに対して透析する。透析を、分子量1000Daのカットオフを有する再生セルロースの透析膜CarlRothordernumber19671により行う。透析の間、水を三回交換する。その後、サンプルをプラスチックペトリ皿に移し前もって重量を決定する、37°Cで完全に乾燥させる。重量の決定後、サンプルを細胞試験に用い得る。参照例1:R16及びS16クモ絹タンパク質の生産紡糸可能なR16及びS16溶液は、それぞれR16及びS16タンパク質ミクロビーズを用いて生産した。これらはWO2008155304に記載されるように調製され得る。参照例2:合成両親媒性オリゴマー分散剤の調製1オリゴマーPフェニルグリシジルエーテル-ブロック-Pカルボキシメチルグリシジルエーテル-33の調製以下の化学式1:で表される、Pフェニルグリシジルエーテル-ブロック-Pカルボキシメチルグリシジルエーテル-33と名付けられた両親媒性オリゴマーは、その構造中に、三つの無極性フェニルエーテル基と、溶液のpHの変化に伴って荷電し得る三つの極性カルボキシル基を有する。合成は全て、慣習的なシュレンク技術Schlenktechniqueを用いて、酸素/空気の非存在下で行った。aエトキシエチルグリシジルエーテルEEGEモノマーの合成最初に、80g108モルのグリシドール及び400mLのエチルビニルエーテルと2gのパラ-トルエンスルホン酸pTsOHを、温度が室温以上に上昇しないように氷浴中で混合した。次にバッチを3時間攪拌した。反応時間の終了後、溶液を三回重炭酸ナトリウムで洗浄し、硫酸ナトリウムで乾燥させた。乾燥物を濾過し、溶媒を真空中で除去した。残渣約250mLのEEGEを油浴の温度を70°Cより高くしないで真空蒸留し、水素化カルシウム上で保管した。その後残渣を濃縮した。b最初のオリゴマー中間体の合成2013ml0148モルの3-フェニルプロパン-1-オールイニシエーターを、148ml0148モルの10Mカリウムtert-ブトキシドを含む50mlのジグリムdiglymeに溶解した。溶液を、tert-ブタノールを除くために、30分真空中で40°Cに加熱した。その後、100ml0739モルのあらかじめ精製したCaH2により濃縮し、乾燥したPGEをイニシエーター溶液に加え、120°Cで一晩攪拌した。翌日、98ml0739モルのEEGEを溶液に加え、混合物を攪拌しながら3時間120°Cで加熱した。ジグリムを真空中で除去し、黄金色のハチミツ様の液体を得た。cオリゴマー中間体の脱保護黄金色のハチミツ様の液体をTHFに溶解し、93mlの濃縮HCl37と混合し、1時間攪拌した。その後、溶液をNaHCO3で中和した。形成されたわずかに茶色がかった沈殿物を、濾過で除去した。一晩の間に、さらに沈殿物が生じた。沈殿物を、全ての固形物が溶液から除去されるまで、遠心分離により除去した。その後、THFを真空中で除去し、11628g011モルの茶色がかった澄んだ油を得た。dオリゴマー中間体のアセチル化茶色がかった油をDMFに溶解し、162g045モルのペンタンで洗浄したNaHと一晩攪拌した。そのプロセスで、溶液は暗褐色に変化する。その後、788g045モルのクロロ酢酸ナトリウムNaTaを加え、バッチを60°Cで一晩攪拌した。DMFを真空中で除去し、残渣を蒸留水に溶解した。産物の淡褐色の沈殿を半濃縮HClにより沈ませ、分離し、その後NaOHに再溶解して、理論の52の収率に相当する127g0127モルの式1のPフェニルグリシジルエーテル-ブロック-Pカルボキシメチルグリシジルエーテル-33を得た。NaOH溶液への溶解は、酸性官能基の代わりに、ナトリウム塩を与える。産物はナトリウム塩として溶液中で数ヶ月間安定である。溶液を使用の前に37°Cで乾燥し、固形物として保管することもできる。2さらなるオリゴマーの調製イニシエーター、モノマー成分のモル分率並びに/又は脱保護及びアセチル化の程度を変更して前記合成方法を繰り返すことで、例えば、以下の式2~5で表される、さらなる両親媒性オリゴマーを調製し得る。実施例1:R16クモ絹タンパク質溶液のBSAによる安定化及び安定化産物の紡糸1.1安定化溶液の調製無脂肪BSAffBSACarlRothGmbHCoKGKarlsruhe及びR16タンパク質を秤量し、スナップトップバイアルに移し、チオシアン酸グアニジン溶液6Mを用いて溶解する。140mgのR16タンパク質と140mgのffBSAの混合物は2mlの6Mチオシアン酸グアニジンに溶解され得る。様々なバッチにおいて用いられるR16及びffBSAの量を表1に示す。溶液を室温約20~25°Cで一晩少なくとも12時間攪拌する。次に生じたffBSA/R16溶液を10mMNaHCO3バッファーpH約105に対して透析する。透析は約12400の分子量カットオフを有する透析チューブSigmaAldrichcatNoD9777100FT、セルロース膜で行う。NaHCO3バッファーの容量は、少なくともサンプル容量の100倍である。透析の間、GdmSCNを可能な限り定量的に除去するために、バッファーを少なくとも1回交換する。透析中の各溶液の安定時間を決定し、以下の表2に記載した。安定は透析の間、特定の溶液でいかなるゲル化も観察されないことを意味する。1.2.安定化溶液の紡糸安定化溶液の紡糸可能性を試験するために、05mlのサンプルを様々な量のPEOポリマーポリオチレンエキシド、Mw=900000;SigmaAldrichcatNo189456250gと共に紡糸する。様々な量の水に溶解したPEOを加え、混合し、前記条件下で実験的エレクトロスピニング系で紡糸する。例えば、以下の溶液を紡糸する:13結果最良の結果は、ffBSA/R16の11混合物により達成され得ると判断された。実施例2:R16クモ絹タンパク質の、R16タンパク質のペプチド断片を用いた安定化及び安定化産物の紡糸2.1R16タンパク質の調製:R16タンパク質を秤量し、スナップトップバイアルに移し、チオシアン酸グアニジン溶液6Mを用いて溶解する。2.2R16ペプチド断片の調製45mgのR16タンパク質を試験管に秤量し、2mlの02MNaOH溶液を加える。試験管をしっかりと密封し、混合物を内部温度が約80°Cになるまで水浴で加熱する水浴の温度は少なくとも85°Cであるべきである。生じる混合物を勢いよく攪拌する約1000rpm。しばらく約10分した後、タンパク質はNaOH溶液に溶解し始める。タンパク質が溶解したらすぐに、サンプルを水浴から取り上げ、冷却する。その後、サンプルはもはや、高熱処理に付すべきではない。なぜなら、結果として断片がさらに分裂し得、完全な分裂が起こり得るからである。非分裂R16タンパク質は溶液中で明瞭に可視的である。断片は易水溶性なので、分裂の間、溶解し始める。タンパク質をもはや見れなくなったらすぐに、完全な加水分解を避けるために分裂を終了させる。この方法で調製されるR16タンパク質加水分解物は、添付の図1で図示されるように約1000~3000の分子量を有するペプチド断片の混合物で構成される。図1は典型的に生産されるR16タンパク質加水分解物のマススペクトラムMaldiToFを示す。2.3.透析浴の調製冷却後、加水分解物をシリンジにより透析浴NaHCO3バッファー10mm、15lに移す。透析浴のpHは約10~11に合わさなければならないNaOH、固形物質。様々なバッチのそれぞれで用いられるR16ペプチドの量を、以下の表3に記載する。2.4透析の実施次に、様々なR16タンパク質含量表3参照を有する21にしたがって調製されたR16サンプルを、R16加水分解物を含むNaHCO3透析バッファーpH約105に対して透析する。このために、サンプルを透析チューブSigmaAldrichcatNoD9777100FT、セルロース膜;分子量カットオフ限界は約12400に移す。NaHCO3バッファーの容量は少なくともサンプル容量の100倍例えば、15リットルであるべきである。透析中の各溶液の安定時間を決定し、以下の表3に記載する。安定は、特定の溶液でいかなるゲル化も観察されないことを意味する。2.5安定化溶液の紡糸R16断片安定化溶液の紡糸可能性を試験するために、05mlのサンプルを様々な量のPEOポリマーポリオチレンエキシド、Mw=900000;SigmaAldrichcatNo189456250gと共に紡糸する。様々な量の水に溶解したPEOを加え、混合し、前記条件下で実験的エレクトロスピニング系で紡糸する。例えば、以下の溶液を紡糸する:実施例3:R16クモ絹タンパク質の、BSAペプチド断片を用いた安定化及び安定化産物の紡糸3.1R16タンパク質の調製:R16タンパク質を秤量し、スナップトップバイアルに移し、チオシアン酸グアニジン溶液6Mを用いて溶解した。3.2BSAペプチド断片の調製45mgのBSAタンパク質を試験管に秤量し、2mlの02MNaOH溶液を加える。試験管をしっかりと密封する。試験管内の混合物を室温で溶解させ、その後内部温度が約80°Cになるまで加熱する。水浴の温度は少なくとも85°Cであるべきである。混合物は勢いよく攪拌しなければならない約1000rpm。1分後、タンパク質はNaOH溶液中で分裂し始め、黄色がかった溶液を形成する。タンパク質が分裂したらすぐに、サンプルを水浴から取り上げ、冷却する。その後、サンプルはもはや、高熱処理に付すべきではない。なぜなら、結果として断片がさらに分裂し得、完全な分裂が起こり得るからである。この方法で調製されるBSAタンパク質加水分解物は、添付の図2で図示されるように約600~4000の分子量を有するペプチド断片の混合物で構成される。図2は典型的な生産されたBSAタンパク質加水分解物のマススペクトラムを示す。3.3.透析浴の調製冷却後、サンプルをシリンジにより透析浴NaHCO3バッファー10mm、15lに移す。透析浴のpHはNaOHによって約10~11に合わさなければならない。BSAペプチドの濃度は約0003~0004である。3.4透析の実施次に、様々なBSAタンパク質含量を有し、様々な量のBSA加水分解物を含む表5参照、2.1に従って調製したR16サンプルを透析する。透析を分子量カットオフ限界約12400を有する透析チューブSigmaAldrich、前記参照で行う。NaHCO3バッファーの容量は少なくともサンプル容量の100倍例えば、15lの透析浴中に2mlのタンパク質溶液であるべきである。透析中の各溶液の安定時間を決定し、表5に記載する。安定は、試験した溶液でいかなるゲル化も観察されないことを意味する。3.5安定化溶液の紡糸BSA断片安定化溶液の紡糸可能性を試験するために、2mlのサンプルを様々な量のPEOポリマーポリオチレンエキシド、Mw=900000;SigmaAldrichcatNo189456250gと紡糸する。様々な量のPEOPEOは固体として添加する、表6を参照のことを加え、混合し、前記条件下で実験的エレクトロスピニング系で紡糸する。例えば、以下の溶液を紡糸する。実施例4:R16クモ絹タンパク質の、合成両親媒性オリゴマーを用いた安定化及び安定化産物の紡糸用いる安定化剤は、参照例21に従って調製したPフェニルグリシジルエーテル-ブロック-Pカルボキシメチルグリシジルエーテル-33である。ナトリウム塩の形で溶液中で数か月間安定である、あらかじめNaOH溶液に溶解したオリゴマーは、溶液として又は37°Cで乾燥させた固体として用いられ得る。4.1R16タンパク質の調製:R16を安定化するために、物質を特に固体として用いる。R16タンパク質を、6Mチオシアン酸グアニジン溶液に溶解する。オリゴマー固体を秤量し、R16溶液に直接溶解する。溶液を一晩ゆっくり攪拌する。この時間中に、オリゴマーはタンパク質に付加する。様々なバッチにおける適切な量的データを以下の表7に要約する。4.2透析の実施:翌日、チオシアン酸グアニジンを除去するために透析を行う。透析される溶液の容量は3mlである磁気スターラーバーを含み、透析中攪拌される。透析溶液の容量は15l10mMNaHCO3バッファー、NaOHでpH=12に調整である。透析を一晩12時間かけて行う。透析中の各溶液の安定時間を決定し、以下の表7に記載する。安定は、試験した溶液でいかなるゲル化も観察されないことを意味する。4.3安定化溶液の紡糸オリゴマー安定化溶液の紡糸可能性を試験するために、05mlのサンプルをPEOポリマーポリエチレンオキシド、Mw=900000;SigmaAldrichcatNo189456250gと紡糸する。固体として添加されるPEOを加え、混合し、前記条件下で実験的エレクトロスピニング系で紡糸する。例えば、以下の溶液を紡糸する:実施例5:本発明の繊維シート体の創傷治癒促進剤の特性の評価本発明に従って生産された繊維実施例2に従って調製される;R16ペプチドによって安定化されたR16の創傷治癒促進効果を、前記細胞増殖試験によって決定する。実験結果を添付の図7に要約する。細胞数が8日間にわたって増加することが観察される。R16タンパク質断片の添加はさらなる細胞数の増加をもたらす最適濃度は006mgml。本明細書で記載した刊行物、特にWO2010057654の開示内容を、参照により明白に本明細書に組み込む。