"一体成形された樹脂からなる側壁部と底壁部とを備え、前記側壁部が、一端に向かって先細となる筒状に形成され、前記底壁部が、光学的に透明であるとともに、前記側壁部の長手軸に略直交する平板状に形成され前記一端を閉塞している核酸増幅反応用容器。前記底壁部が、可視光に対して70以上の透過率を有する請求項1に記載の核酸増幅反応用容器。前記底壁部は、両方の端面が鏡面加工されている請求項1または請求項2に記載の核酸増幅反応用容器。前記樹脂が、ポリプロピレンである請求項1から請求項3のいずれかに記載の核酸増幅反応用容器。前記樹脂が、シクロオレフィン系樹脂である請求項1から請求項3のいずれかに記載の核酸増幅反応用容器。前記底壁部が、0.15~0.25mmの厚さを有する請求項1から請求項5のいずれかに記載の核酸増幅反応用容器。前記側壁部および底壁部が、前記側壁部の半径方向に複数組連結されてなる請求項1から請求項6のいずれかに記載の核酸増幅反応用容器。しかしながら、特許文献1および2のPCRチューブの場合、試料全体の蛍光強度を測定することは可能であるが、共焦点光学系による高感度な光学測定が可能な構成とはなっていない。したがって、核酸増幅反応後の試料を、共焦点顕微鏡を使用した蛍光相関分光分析法FCSや蛍光強度分布分析法FIDA、蛍光偏光解析法FIDA-Poなどによって高感度に光学測定するときには、底面がカバーガラスからなる容器に試料を移し変えなければならない。この移し変えの作業は、特に試料が微量であったり多数の試料を同時に扱ったりする場合には煩雑となり、試料の取り違えが生じる可能性もあるという問題がある。本発明は、上述した事情に鑑みてなされたものであって、核酸増幅反応後に試料の高感度な光学測定を簡便に行うことができる核酸増幅反応用容器を提供することを目的とする。上記目的を達成するため、本発明は以下の手段を提供する。本発明は、一体成形された樹脂からなる側壁部と底壁部とを備え、前記側壁部が、一端に向かって先細となる筒状に形成され、前記底壁部が、光学的に透明であるとともに、前記側壁部の長手軸に略直交する平板状に形成され、前記一端を閉塞している核酸増幅反応用容器を提供する。本発明によれば、内部に収容した試料中の核酸をPCR等の核酸増幅反応によって増幅させた後、底壁部の下側から内部の試料をそのまま光学測定装置によって測定することができる。この場合に、平板状の底壁部を介して光学顕微鏡によって内部を観察可能でありながら、側壁部と底壁部とが樹脂から一体成形されていることにより核酸増幅反応時の比較的高い温度や急激な温度変化にも十分に耐性を有している。これにより、核酸増幅反応後に試料を他の容器等に移し変えることなくそのまま簡便に光学顕微鏡等によって高感度な光学測定を行うことができる。上記発明においては、前記底壁部が、可視光に対して70以上の透過率を有していることが好ましい。このようにすることで、光学測定装置による測定精度を向上することができる。また、上記発明においては、前記底壁部は、両方の端面が鏡面加工されていることが好ましい。このようにすることで、底壁部の光透過率を向上することができる。また、上記発明においては、前記樹脂が、ポリプロピレンPPであってもよい。このようにすることで、試料中の核酸などの側壁部および底壁部への吸着を低減することができる。また、上記発明においては、前記樹脂が、シクロオレフィン系樹脂COPであってもよい。このようにすることで、COPはガラスと同様の良好な光学的特性を有するので、光学測定により好適に使用することができる。また、上記発明においては、前記底壁部が、0.15~0.25mmの厚さを有することが好ましい。このようにすることで、従来の対物レンズによっても、補正環によって良好に収差を補正した試料の像を得ることができる。また、上記発明においては、前記側壁部および底壁部が、前記側壁部の半径方向に複数組連結されてなっていてもよい。このようにすることで、複数の試料を同時に扱う際の操作を簡便にすることができる。本発明によれば、核酸増幅反応後に試料の高感度な光学測定を簡便に行うことができるという効果を奏する。以下に、本発明の一実施形態に係る核酸増幅反応用容器1について図1および図2を参照して説明する。本実施形態に係る核酸増幅反応用容器1は、図1に示されるように、一端に向かって先細に形成されたテーパ部21を有する筒状の側壁部2と、該側壁部2の一端を閉塞する平板状の底壁部3とを備えている。側壁部2の他端は開口し、別体の蓋体4によって密閉可能となっている。また、側壁部2は、他端の位置において半径方向外方に突出したフランジ部22が形成されている。なお、他端は、蓋体4に代えてシールなどによって密閉されてもよい。このように、核酸増幅反応用容器1は、側壁部2が従来のPCRチューブと同様の形状を有しており、核酸増幅反応に用いられる従来の機器や周辺用具、例えば、サーマルサイクラやチューブラックなどに使用することができる。底壁部3は、テーパ部21の先端から連続して一体成形され、側壁部2の長手方向に対して略垂直に形成されている。底壁部3は、両方の端面が鏡面加工されており、可視光に対して十分に高い透過率を、好ましくは70以上の透過率を有している。また、底壁部3は、0.15~0.25mmの厚さを有している。これにより、比較的高倍率の対物レンズを使用して、底壁部3を介して外側から内側を観察することができる。また、対物レンズとして、0.17mmの厚さのカバーガラスの使用に最適化されている従来の対物レンズを使用しても、対物レンズに備えられた補正環の調節によって良好に収差が補正された鮮明な像を得ることができる。側壁部2および底壁部3は、核酸の吸着性が低く、さらに耐薬品性に優れるPPからなる。また、側壁部2および底壁部3は、より光学測定に好適な構成とするために、ガラスと同様の光学測定に良好な屈折率などの光学特性を有するCOPからなっていてもよい。次に、このように構成された核酸増幅反応用容器1の作用について説明する。本実施形態に係る核酸増幅反応用容器1は、PCR等の核酸増幅反応および光学測定に使用される。まず、核酸増幅反応用容器1内に収容した試料中の核酸を核酸増幅反応によって増幅させる。このときに、増幅された核酸と結合することにより発光する蛍光色素を試料中に添加しておく。次いで、核酸増幅反応用容器1をチューブラック等によって支持させた状態で倒立型の光学顕微鏡によって底壁部3の下側から底壁部3の上側の試料を観察する。これにより、増幅された核酸を蛍光色素の発光として観察することができる。このときに、底壁部3が十分に薄い平板状に形成され、かつ、可視光に対して十分に高い透過率を有しているので、生体試料観察用の光学顕微鏡に装着されている比較的倍率が高い対物レンズを使用して試料を高感度に観察することができる。例えば、共焦点光学顕微鏡によって試料中の微小領域内の核酸を一分子レベルで観察することにより、FCSやFIDAなどの高感度な光学測定を行うことができる。また、底壁部3の内面に細胞を接着させることが可能であるので、例えば、細胞内で増幅させた核酸について高感度に測定することもできる。この場合に、樹脂からなる側壁に底面としてカバーガラスが接合された容器の場合、核酸増幅反応時に行う温度サイクルにおいて、カバーガラスや接合部分が比較的高い温度や急激な温度変化に耐えられずに破損してしまう、また、比較的高価になってしまうという。これに対して、本実施形態に係る核酸増幅反応用容器1によれば、樹脂により側壁部2と底壁部3とが一体成形されているため、PCRの温度サイクルにも十分に耐えることができるとともに、比較的安価に製造することができるという利点がある。また、底壁部3が比較的高倍率の対物レンズによる観察にも適した形状および光学特性を有しているので、共焦点光学顕微鏡などを使用した高感度な光学測定であっても、核酸増幅反応の後に試料を他の容器に移し替えることなく同一の核酸増幅反応用容器1内において簡便に行うことができるという利点がある。なお、本実施形態においては、単一の核酸増幅反応用容器1について説明したが、これに代えて、図2に示されるように、複数組図示する例では8つの側壁部2および底壁部3が、側壁部2同士が略平行に配列されるように連結されていてもよい。また、複数組の側壁部2および底壁部3が平面状に2方向に連結されることによりプレート様に構成されていてもよい。このようにすることで、複数の試料の核酸増幅反応の操作を一度に行うことができる。また、図1には蓋体4として側壁部2および底壁部3と別体のものを示したが、図2に示されるように、蓋体4は側壁部2に連結されていてもよい。また、核酸増幅反応用容器1の用途は上述したものに限定されず、例えば、ハイブリダイゼーション処理や、LAMP法Loop-mediatedIsothermalAmplificationなどの定温増幅反応にも用いられることができる。また、核酸増幅反応と並行して試料を光学測定することにより、増幅された核酸の濃度などを実時間で高感度に測定することもできる。次に、上述した本発明の一実施形態に係る核酸増幅反応用容器の実施例について説明する。実施例1本発明に係る2種類の核酸増幅反応用容器を以下の手順により製造した。PP原料として、ノバッテクMG03B日本ポリプロ社製、COP原料としてZEONEX480日本ゼオン社製を用いた。これらの樹脂から、側壁部が従来のPCRチューブと同様の形状を有する核酸増幅反応用容器を射出一体成形により形成した。射出一体成形の際に、底壁部が鏡面となるように加工が施された金型を使用した。以上の手順により、PPからなる第1の核酸増幅反応用容器およびCOPからなる第2の核酸増幅反応用容器を製造した。底壁部の厚さは、0.2mmとした。実施例2次に、実施例1に係る第1および第2の核酸増幅反応用容器の温度応答性を以下の実験により評価した。第1および第2の核酸増幅反応用容器内に試料として20μLの超純水を注入し、該超純水の上にミネラルオイル20μLを重層させることにより超純水の蒸発を防止した。次に、サーマルサイクラPTC-225、MJリサーチ社製を使用して温度サイクルを加え、熱電対によって各核酸増幅反応用容器内の試料の温度を測定した。対照実験として、従来のPP製PCRチューブQSP社製についても同様の測定を行った。第1の核酸増幅反応用容器1の測定結果を図3に、第2の核酸増幅反応用容器の測定結果を図4に示す。図3および図4において、破線が従来のPCRチューブの試料温度を、実線が実施例1に係る核酸増幅反応用容器の試料温度を示している。なお、各核酸増幅反応用容器に加えた温度サイクルは以下の通りである。STEP温度時間127°C30秒290°C30秒355°C30秒472°C30秒5gotoSTEP29サイクル627°C30秒実施例1の第1および第2の核酸増幅反応用容器内の試料において、従来のPCRチューブ内の試料と略同様の温度変化が測定された。また、温度サイクルを加えた後、底壁部には変形や曇りなどの異常は確認されなかった。これにより、実施例1に係る第1および第2の核酸増幅反応用容器は、従来のPCRチューブと同様にPCRに使用可能であることが確認された。実施例3次に、実施例1の第1および第2の核酸増幅反応用容器を使用してPCRを行った。核酸増幅反応用容器内の試料の蒸発を防ぐため、従来のPCRチューブ用の蓋QSP社製により開口を塞いでPCRを行った。PCRにより得られた産物を、2.5アガロースゲルを用いて電気泳動した結果を図5に示す。なお、PCRに使用したプライマ1シグマ社製の塩基配列は配列番号1で、プライマ2シグマ社製の塩基配列は配列番号2で、それぞれ配列表内において表される。PCRの温度サイクルは以下の通りである。試料の成分滅菌水5μL2×AmpliTaqGoldMasterMix10μLプライマ12μL5μMプライマ22μL5μM鋳型1μL5ng/μL全液量20μL温度サイクルSTEP温度時間195°C10分295°C30秒367.7°C30秒472°C30秒5gotoSTEP239サイクル672°C10分図5に示されるように、鋳型を含むポジティブコントロール試料Pos.においては、第1の核酸増幅反応用容器PP製および第2の核酸増幅反応用容器COP製の両方で産物図中、矢印を参照。が確認され、非特異産物は確認されなかった。一方、鋳型を含まないネガティブコントロール試料Neg.においては、両方の核酸増幅反応用容器において産物は確認されなかった。以上の結果から、実施例1に係る第1および第2の核酸増幅反応用容器は、PCRに正常に使用可能であることが確認された。実施例4次に、実施例1の第1および第2の核酸増幅反応用容器を用いてFCS測定を行った。測定試料として、蛍光色素であるATTO633励起波長633nmの1nMの溶液を用いた。測定には一分子蛍光分析システムMF20オリンパス社製を用いた。計測条件は、レーザの出力を100μW、計測時間を10秒とした。5回測定を行い、5回の測定値の平均値を算出した。対照実験として、ガラスボトムプレートオリンパス社製を使用した以外は同じ条件で測定を行った。その結果を表1に示す。ガラスボトムプレートを使用した場合に比べて、第1の核酸増幅反応用容器PP製および第2の核酸増幅反応用容器COP製を使用した場合、共焦点顕微鏡のレーザ光が集光される焦点領域コンフォーカルボリュームのサイズに対応する共焦点領域の縦横比がやや大きくなった。これに対応して拡散時間も若干長くなったが、十分な精度でFCSによる測定を行うことができることが確認された。実施例5次に、従来のPCRチューブQSP社製を使用し、1塩基のみ異なるプライマ3,4を用いてPCRを行い、得られた産物を実施例1の第1の核酸増幅反応用容器を使用してFCS測定することによりSNP一塩基多型タイピングを行った。なお、ポジティブコントロール用の試料として、鋳型を含む試料を用いた。鋳型は、1種類のホモ接合型および2種類のヘテロ接合型を使用した。ネガティブコントロール用の試料として、鋳型を含まない試料を使用した。プライマ3,4シグマ社製はそれぞれ蛍光色素ATTO647N励起波長543nmまたはTAMRA励起波長633nmによって修飾した。PCRに使用したプライマ3の塩基配列は配列番号3で、プライマ4の塩基配列は配列番号4で、それぞれ配列表内において表される。このようにして行ったSNPタイピングの結果を図6に示す。図6の横軸のK2は増幅された試料の第2成分伸長した鎖長のうち長い方の比率を示し、横軸に励起波長543nmにおける比率、縦軸に励起波長633nmにおける比率を示している。図中、aはネガティブコントロールであり、各軸に近い位置の左上もしくは右下に位置するbおよびdは一方の成分のみ有するホモ型を示し、右上のcは両方の成分を有するヘテロ型を示している。図6から分かるように、実施例1の第1の核酸増幅反応用容器はFCSによるSNPタイピングに使用可能であることが確認された。FCSと同様に共焦点光学系を用いた測定方法であるFIDAおよびFIDA-Poにも実施例1の核酸増幅反応用容器を使用可能であると考えられる。実施例6次に、実施例1の第1の核酸増幅反応用容器を使用してPCRおよびFCSの両方を行い、SNPタイピングを行った。PCRに用いた試料の成分は次の通りである。プライマ3,4は、実施例5と同じ塩基配列のものを使用した。試料の成分滅菌水1.0μL10×Buffer2.0μLdNTPMix3.2μL10mM2.5mMeachMgCl23.2μL25.0mMStoffelFragment0.2μL10U/μLプライマ33.2μL5.0μMプライマ43.2μL5.0μMプライマt1.0μL100nMプライマa1.0μL100nM鋳型2.0μL2500copy/μL全液量20.0μLポジティブコントロール用の試料として、鋳型GENSCRIPT社製を含む試料を用いた。鋳型は、ホモ型およびヘテロ型を1種類ずつ使用した。また、ネガティブコントロール用の試料として、鋳型を含まない試料を用いた。プライマ3,4は、蛍光色素であるATTO647N励起波長543nmおよびTAMRA励起波長633nmによって修飾した。該試料をMF20を使用してFCS測定した。FCS測定の条件は、各波長におけるレーザの出力を100μWとし、各試料を15秒×3回測定した。そして、3回の測定値の平均値を測定結果とした。なお、PCRの温度サイクルは以下の通りである。ステップ195°C2分ステップ29560秒ステップ355.530秒ステップ47220秒ステップ5gotoSTEP234サイクルステップ67210分ステップ710everこのようにして行ったFCS測定によるSNPタイピングの結果を図7に示す。図7のK2は増幅された試料の第2成分伸長した鎖長の長い方の比率を示し、横軸に励起波長543nmでの比率、縦軸に励起波長633nmでの比率を示している。図中、縦軸に近い左上のbは一方の成分のみを有するホモ型を示し、右上のcは両方の成分を高い比率で有するヘテロ型を示し、左下のaは2つの成分を共に有さないネガティブコントロールを示している。図7から分かるように、実施例1に係る第1の核酸増幅反応用容器を使用して正常にSNPタイピングを行うことができることが確認された。すなわち、実施例1の核酸増幅反応用容器は、PCRとFCSの両方に連続して使用可能であることが確認された。FCSと同様に共焦点光学系を用いた測定方法であるFIDAおよびFIDA-Poにも、PCRの後に連続して実施例1の核酸増幅反応用容器を使用可能であると考えられる。"