"ヤトロファの種子全体からのヤトロファメチルエステルJME作製の副生成物を利用した、脂質抽出のための、油を含有するクロレラバリアビリスの作製のための統合プロセスであって、i.既知の方法によって、ヤトロファの種子の4~6w/wの窒素を有する、ヤトロファメチルエステルJME作製の副生成物としての脱油されたかすを提供するステップと、ii.ステップiにおいて提供された前記脱油されたかすを、熱酸性水溶液で加水分解し、続いてアルカリ性材料で5.5~8.5の範囲内にpHを調整して、窒素に富んだヤトロファ油かす加水分解物JOCHを得るステップと、iii.既知の方法によって、メタノールが除去されたグリセロール層を含有する粗グリセロールGL7およびGL8を提供するステップと、iv.ステップiiiにおいて提供された、1~5w/vの前記メタノールが除去されたグリセロール層を含有する粗グリセロールGL7およびGL8を、ステップiiにおいて得られた、1~10v/vのヤトロファ油かす加水分解物に加えて、クロレラバリアビリスのための増殖兼作製培地を調製するステップと、v.1~10v/vの前記クロレラバリアビリスの種培養物を、ステップivにおいて得られた増殖兼作製培地中に播種し、7.0~8.0の範囲内のpHで、25~40°Cの範囲内の温度で、7~15日間の範囲内の期間インキュベートして、脂質を含有するバイオマスを得るステップと、vi.または代わりに、1~10v/vの前記クロレラバリアビリスの種培養物を、種培養物播種の第1日目に水道水とともに、最初の4~10日間のインキュベーションでは海水のみまたは1:2で水道水で希釈した海水とともに、播種し、その後第4~第10日目後にGL7を加えて、脂質を含有するバイオマスを得るステップと、vii.または代わりに、1~10v/vの前記クロレラバリアビリスの種培養物を、種培養物播種の第1日目に水道水とともに、最初の4~10日間のインキュベーションでは海水のみまたは1:2で水道水で希釈した海水とともに播種し、その後第4~第10日目後にGL8を加えて、脂質を含有するバイオマスを得るステップと、viii.任意に、1~10v/vの前記クロレラバリアビリスの種培養物を、ステップiiiにおいて得られた増殖兼作製培地中に播種し、屋外でのバイオマス作製中に、紫外線特異的色素を加えて、40°C~50°の範囲内の温度で、紫外線損傷から保護し、前記培養物の生存能を維持し、7.0~8.0の範囲内のpHで、25~40°Cの範囲内の温度で、7~15日間の範囲内の期間インキュベートして、脂質を含有するバイオマスを得るステップと、ix.脂質抽出のために、ステップiv~viiにおいて得られた前記バイオマスを日光で乾燥させるか、または前記湿ったバイオマスを直接使用するステップと、x.既知の方法によって、ステップviiiにおいて得られたバイオマスから前記脂質を抽出するステップとを含む統合プロセス。使用する酸が、H3PO4およびH2SO4からなる群から選択される、請求項1に記載の統合プロセス。前記アルカリ性材料が、粗グリセロール層、水酸化カリウムおよび水酸化マグネシウムからなる群から選択される、請求項1に記載の統合プロセス。使用する前記紫外線色素が、2,5-チオフェンジイルビス5-tert-ブチル-1,3-ベンゾオキサゾールである、請求項1に記載の統合プロセス。既知の方法によって、メタノールが除去されたグリセロール層が、グリセロール層からエタノールを一掃することによって得られる、請求項1に記載の統合プロセス。細胞乾燥重量に対する脂質の収量が、20から35の範囲内である、請求項1に記載の統合プロセス。以下の例は、例示のために示し、したがって、本発明の範囲を制限すると解釈すべきではない。例1クロレラ種が、最も効率的な藻類の1つであることを発見し、本発明において使用した。1リットルの蒸留水に溶解された、16.8グラムの重炭酸ナトリウム、0.5gのリン酸水素二カリウム、2.5グラムの硝酸ナトリウム、0.2gの硫酸マグネシウム、1.0グラムの塩化ナトリウム、0.01グラムの硫酸第一鉄、1.0gの硫酸カリウム、0.04グラムの塩化カルシウムおよび0.08gのEDTAを含む、200mlのZarrouk培地を、調製した。次いで、培地を、121°Cで20分間オートクレーブした。培地に、20のクロレラ培養物540nmでOD1.4~1.6を、播種する。フラスコを、静置条件で、30°Cで維持した。培養物の光学濃度を、3日間の一定間隔でモニターした。21日後、細胞を、遠心分離することによって収穫し、得られたペレットを60°Cで炉乾燥して、0.13gおよび16.22の細胞乾燥重量の脂質含有量を有する、0.801gの細胞乾燥重量を得た。例2クロレラバリアビリスを、静置条件で、光インキュベーションlightincubation下で、200mlの海水において増殖させた。増殖速度を、最大16日間分光光度的に540nmでのOD測定した。16日後;細胞集団を、11,000rpmで、30°C、10分間の遠心分離によって収穫し、細胞ペレットを蒸留水で2回洗浄し、炉60°Cにおいて16時間乾燥させた。脂質を、乾燥させたバイオマスから、クロロホルム:メタノール2:1を使用して抽出し、溶媒の蒸発後、総脂質を得た。得られたバイオマスは、0.347gであり、0.0506グラム、および14.58の細胞乾燥重量の脂質含有量を有していた。例3クロレラバリアビリスを、静置条件で、暗所下で、海水において増殖させた。増殖速度を、最大16日間分光光度的に540nmでのOD測定した。16日後;細胞集団を、11,000rpmで、28°C、10分間の遠心分離によって収穫し、細胞ペレットを蒸留水で2回洗浄し、炉において60°Cで16時間乾燥させた。脂質を、乾燥させたバイオマスから、クロロホルム:メタノール2:1を使用して抽出し、溶媒の蒸発後、総脂質を得た。得られたバイオマスは、0.217gであり、0.0312g、および14.37の細胞乾燥重量の脂質含有量を有していた。例4クロレラバリアビリスを、1のヤトロファバイオディーゼル廃棄物残渣GL8/BWR3とともに、撹拌条件で、海水において増殖させ、12:12hの暗:明周期を有する白色蛍光管によって提供される60μEm-2s-1の光強度下でインキュベートさせた。増殖速度を、最大16日間分光光度的に540nmでのOD測定した。16日後;細胞集団を、11,000rpmで、30°C、10分間の遠心分離によって収穫し、細胞ペレットを蒸留水によって2回洗浄し、炉において60°Cで16時間乾燥させた。脂質を、乾燥させた集団から、クロロホルム:メタノール2:1を使用して抽出し、溶媒の蒸発後、総脂質を得た。クロレラ種の乾燥されたバイオマス0.367gから、0.054gの脂質含有量、すなわち14.71の細胞乾燥重量。例5クロレラバリアビリスを、2のヤトロファバイオディーゼル廃棄物残渣GL8/BWR3とともに、撹拌条件で、海水において増殖させ、12:12hの暗:明周期を有する白色蛍光管によって提供される60μEm-2s-1の光強度下でインキュベートさせた。増殖速度を、最大16日間分光光度的に540nmでのOD測定した。16日後;細胞集団を、11,000rpmで、27°C、10分間の遠心分離によって収穫し、細胞ペレットを蒸留水によって2回洗浄し、炉において60°Cで16時間乾燥させた。脂質を、乾燥させた集団から、クロロホルム:メタノール2:1を使用して抽出し、溶媒の蒸発後、総脂質を得た。クロレラ種の乾燥されたバイオマス0.420gから、0.077gの脂質含有量、すなわち18.33の細胞乾燥重量。例6クロレラバリアビリスを、1のヤトロファバイオディーゼル廃棄物残渣GL8/BWR3とともに、撹拌条件で、光インキュベーション下で、希釈した海水水道水において1:2において増殖させた。増殖速度を、最大16日間分光光度的に540nmでのOD測定した。16日後;細胞集団を、11,000rpmで、26°C、10分間の遠心分離によって収穫し、細胞ペレットを蒸留水で2回洗浄し、炉において60°Cで16時間乾燥させた。脂質を、乾燥させたバイオマスから、クロロホルム:メタノール2:1を使用して抽出し、溶媒の蒸発後、総脂質を得た。得られたバイオマスは、0.387gであり、0.087mg、および22.48の細胞乾燥重量の脂質含有量を有していた。例7クロレラバリアビリスを、2のヤトロファバイオディーゼル廃棄物残渣GL8/BWR3とともに、撹拌条件で、光インキュベーション下で、希釈した海水水道水において1:2において増殖させた。増殖速度を、最大16日間分光光度的に540nmでのOD測定した。16日後;細胞集団を、11,000rpmで、30°C、10分間の遠心分離によって収穫し、細胞ペレットを蒸留水で2回洗浄し、炉において60°Cで16時間乾燥させた。脂質を、乾燥させたバイオマスから、クロロホルム:メタノール2:1を使用して抽出し、溶媒の蒸発後、総脂質を得た。得られたバイオマスは、0.453gであり、0.097g、および21.41の細胞乾燥重量の脂質含有量を有していた。例8クロレラバリアビリスを、1のヤトロファバイオディーゼル廃棄物残渣GL8/BWR3とともに、静置条件で、光インキュベーション下で、海水において増殖させた。増殖速度を、最大16日間分光光度的に540nmでのOD測定した。16日後;細胞集団を、11,000rpmで、30°C、10分間の遠心分離によって収穫し、細胞ペレットを蒸留水で2回洗浄し、炉において60°Cで16時間乾燥させた。脂質を、乾燥させたバイオマスから、クロロホルム:メタノール2:1を使用して抽出し、溶媒の蒸発後、総脂質を得た。得られたバイオマスは、0.447gであり、0.085g、および19.01の細胞乾燥重量の脂質含有量を有していた。例9クロレラバリアビリスを、2のヤトロファバイオディーゼル廃棄物残渣GL8/BWR3とともに、静置条件で、光インキュベーション下で、海水において増殖させた。増殖速度を、最大16日間分光光度的に540nmでのOD測定した。16日後;細胞集団を、11,000rpmで、30°C、10分間の遠心分離によって収穫し、細胞ペレットを蒸留水で2回洗浄し、炉において、60°Cで16時間乾燥させた。脂質を、乾燥させたバイオマスから、クロロホルム:メタノール2:1を使用して抽出し、溶媒の蒸発後、総脂質を得た。得られたバイオマスは、0.407gであり、0.074g、および18.18の細胞乾燥重量の脂質含有量を有していた。例10クロレラバリアビリスを、1のヤトロファバイオディーゼル廃棄物残渣GL8/BWR3とともに、静置条件で、光インキュベーション下で、希釈した海水水道水において1:2において増殖させた。増殖速度を、最大16日間分光光度的に540nmでのOD測定した。16日後;細胞集団を、11,000rpmで、30°C、10分間の遠心分離によって収穫し、細胞ペレットを蒸留水で2回洗浄し、炉において60°Cで16時間乾燥させた。脂質を、乾燥させたバイオマスから、クロロホルム:メタノール2:1を使用して抽出し、溶媒の蒸発後、総脂質を得た。得られたバイオマスは、0.463gであり、0.125g、および26.99の細胞乾燥重量の脂質含有量を有していた。例11クロレラバリアビリスを、2のヤトロファバイオディーゼル廃棄物残渣GL8/BWR3とともに、静置条件で、光インキュベーション下で、希釈した海水水道水において1:2において増殖させた。増殖速度を、最大16日間分光光度的に540nmでのOD測定した。16日後;細胞集団を、11,000rpmで、30°C、10分間の遠心分離によって収穫し、細胞ペレットを蒸留水で2回洗浄し、炉において60°Cで16時間乾燥させた。脂質を、乾燥させたバイオマスから、クロロホルム:メタノール2:1を使用して抽出し、溶媒の蒸発後、総脂質を得た。得られたバイオマスは、0.487gであり、0.163g、および33.47の細胞乾燥重量の脂質含有量を有していた。例12クロレラバリアビリスを、1のヤトロファバイオディーゼル廃棄物残渣GL8/BWR3とともに、静置条件で、暗所インキュベーション下で、希釈した海水水道水において1:2において増殖させた。増殖速度を、最大16日間分光光度的に540nmでのOD測定した。16日後;細胞集団を、11,000rpmで、30°C、10分間の遠心分離によって収穫し、細胞ペレットを蒸留水で2回洗浄し、炉において60°Cで16時間乾燥させた。脂質を、乾燥させたバイオマスから、クロロホルム:メタノール2:1を使用して抽出し、溶媒の蒸発後、総脂質を得た。得られたバイオマスは、0.398gであり、0.0863g、および21.68の細胞乾燥重量の脂質含有量を有していた。例13クロレラバリアビリスを、2のヤトロファバイオディーゼル廃棄物残渣GL8/BWR3とともに、静置条件で、暗所インキュベーション下で、希釈した海水水道水において1:2において増殖させた。増殖速度を、最大16日間分光光度的に540nmでのOD測定した。16日後;細胞集団を、11,000rpmで、30°C、10分間の遠心分離によって収穫し、細胞ペレットを蒸留水で2回洗浄し、炉において60°Cで終夜乾燥させた。脂質を、乾燥させたバイオマスから、クロロホルム:メタノール2:1を使用して抽出し、溶媒の蒸発後、総脂質を得た。得られたバイオマスは、0.378mgであり、0.0839g、および22.19の細胞乾燥重量の脂質含有量を有していた。例14使用済みのグリセロール層、GL7を、脂質の微細藻類の作製のための栄養源として利用した。GL7を、微細藻類クロレラにおける脂質の蓄積のために直接利用した。4~6w/wのNを有するヤトロファ油かすを、H3PO4/H2SO4の熱酸性水溶液で処置し、その後pHを、アルカリ性材料、例えば粗グリセロール層、水酸化カリウムおよび水酸化マグネシウムで適切に調節することによって、ヤトロファ油かす加水分解物JOCHを抽出して、緩衝作用を有し、また加水分解物の栄養価に寄与する塩を得た。単離された微細藻類クロレラバリアビリスを、GL-7およびJOCHを使用して、増殖および作製のための細胞内の脂質の蓄積のために使用した。例15クロレラバリアビリスを、水道水とともに、1のJOCH、2のJOCH、5のJOCHおよび10のJOCHとともに増殖させて、光のある静置条件下で、クロレラバリアビリスの細胞を増殖させた。増殖速度を、最大21日間分光光度的に540nmでのOD測定した。21日後;細胞集団を、11,000rpmで、30°C、10分間の遠心分離によって収穫し、細胞ペレットを蒸留水によって2回洗浄し、炉60°Cにおいて16時間乾燥させた。脂質を、重さを量った乾燥させた集団から、クロロホルム:メタノール2:1を使用して抽出し、溶媒の蒸発後、総脂質を得た。1のJOCHにおいて、最も高いバイオマスが得られたが、脂質含有量のはより少ない。この例は、バイオマス作製のために1のJOCHが有用であり、これは、バイオマス作製に使用することができるが、脂質の作製には使用できないことを教示している。脂質蓄積のために、バイオマスの増強後、脂質蓄積を達成することができる。例16クロレラバリアビリスを、水道水とともに、1のGL7、2のGL7、5のGL7とともに増殖させて、光のある静置条件で、クロレラバリアビリスの細胞を増殖させた。増殖速度を、最大21日間分光光度的に540nmでのOD測定した。21日後;細胞集団を、11,000rpmで、30°C、10分間の遠心分離によって収穫し、細胞ペレットを蒸留水によって2回洗浄し、炉60°Cにおいて16時間乾燥させた。脂質を、乾燥させたバイオマスから、クロロホルム:メタノール2:1を使用して抽出し、溶媒の蒸発後、総脂質を得た。2のGL7において、最も高いバイオマスが得られたが、脂質含有量のはより少ない。例17クロレラバリアビリスを、水道水における2のGL7とともに、2、5、10のJOCHの組合せとともに増殖させて、光のある静置条件で、クロレラバリアビリスの細胞を増殖させた。増殖速度を、最大21日間分光光度的に540nmでのOD測定した。21日後;細胞集団を、11,000rpmで、30°C、10分間の遠心分離によって収穫し、細胞ペレットを蒸留水で2回洗浄し、炉60°Cにおいて16時間乾燥させた。脂質を、重さを量った乾燥させた集団から、クロロホルム:メタノール2:1を使用して抽出し、溶媒の蒸発後、総脂質を得た。2のGL7および10のJOCHにおいて、最も高いバイオマス3.1グラムが、22.580.7グラムの脂質含有量で得られた。例18クロレラバリアビリスを、200mlの培地におけるGL7およびJOCHの異なる濃度とともに、静置条件で、光インキュベーションで、海水において増殖させた。増殖速度を、最大21日間分光光度的に540nmでのOD測定した。1つのセットにおいて、JOCHを最初に加え0日、GL-7を増殖の10日後に加え、バイオマスおよび脂質組成変化を観察する。21日後;細胞集団を、11,000rpmで、30°C、10分間の遠心分離によって収穫し、細胞ペレットを蒸留水によって2回洗浄し、炉において16時間乾燥させた。脂質を、重さを量った乾燥させた集団から、クロロホルム:メタノール2:1を使用して抽出し、溶媒の蒸発後、総脂質を得た。クロレラのバイオマスおよび脂質含有量は、海水における1のJOCH0日および第10日目に加えるGL7を含有する培地において最大であることがわかった。例190.33の濃度で使用する2,5-チオフェンジイルビス5-tert-ブチル-1,3-ベンゾオキサゾールクラスの色素を通しての、紫外線損傷からの、クロレラバリアビリスの保護を、紫外線光の供給源から10cmおよび50cmの距離で維持した50mlの培養物を、層流の紫外線ランプ30W下で12時間暴露することによって、研究室条件下で試験した。細胞損傷を、紫外線可視分光光度計540nmでのODおよび紫外線蛍光試験540nmでの励起を通して、定量的に決定した;クロレラの乾燥細胞集団および脂質含有量に及ぼす紫外線の効果を試験し、以下の結果が明らかになった。例200.33の濃度で使用する2,5-チオフェンジイルビス5-tert-ブチル-1,3-ベンゾオキサゾールクラスの色素を通しての、紫外線損傷からの、クロレラバリアビリスの保護を、特にGujaratにおける、インドの夏条件のピーク期間中に、テラスでの屋外培養下で、以下の照射データ表xyanとともに試験した。100mlの培養物を2日間直射日光下に暴露した。総紫外線照射を、1日を通して、EppleyTUVR図に示すようにを使用して、wm-2において測定した。細胞損傷を、紫外線可視分光光度計540nmでのODおよび紫外線蛍光試験540nmでの励起を通して、定量的に決定した。屋外実験は、クロレラバイオマスおよび脂質に及ぼす紫外線照射の効果を示している。例21クロレラバリアビリスを、200mlの培地とともに、バイオディーゼル副生成物BWR6およびJOCHの異なる濃度とともに、静置条件で、光インキュベーションで、海水において増殖させた。増殖速度を、最大18日間分光光度的に540nmでのOD測定した。JOCHを最初に加え0日、BWR-6を増殖の10日後に加え、バイオマスおよび脂質組成変化を観察する。18日後;細胞集団を、11,000rpmで、30°C、10分間の遠心分離によって収穫し、細胞ペレットを蒸留水によって2回洗浄し、炉において16時間乾燥させた。脂質を、重さを量った乾燥させた集団から、クロロホルム:メタノール2:1を使用して抽出し、溶媒の蒸発後、総脂質を得た。例22クロレラバリアビリスを、200mlの培地とともに、バイオディーゼル副生成物BWR6およびJOCHの異なる濃度とともに、静置条件で、光インキュベーションで、海水において増殖させた。増殖速度を、最大10日間分光光度的に540nmでのOD測定した。JOCHを最初に加え0日、BWR-6を増殖の04日後に加え、バイオマスおよび脂質組成変化を観察する。10日後;細胞集団を、11,000rpmで、30°C、10分間の遠心分離によって収穫し、細胞ペレットを蒸留水によって2回洗浄し、炉において16時間乾燥させた。脂質を、重さを量った乾燥させた集団から、クロロホルム:メタノール2:1を使用して抽出し、溶媒の蒸発後、総脂質を得た。例23クロレラバリアビリスを、540nmでの0.6ODの10の接種物とともに、覆いのないプラスチックタンクl×b×h1.47m×0.74m.0.22mにおける100リットルの培地において、希釈したZarrouk培地水道水において1:2において増殖させた。増殖速度を、最大16日間分光光度的に540nmでのOD測定した。16日後;細胞集団を、H3PO4を使用して、pH調整pH4.5によって安定させ、その後、脱水した細胞を日光で乾燥させた。脂質を、乾燥させたバイオマスから、クロロホルム:メタノール2:1を使用して抽出し、溶媒の蒸発後、総脂質を得た。得られたバイオマスは、100リットルにおいて401.21グラムであり、97.29グラムすなわち24.25の細胞乾燥重量の脂質含有量を有していた。例24クロレラバリアビリスを、540nmでの0.6ODの10の接種物とともに、覆いのないプラスチックタンクl×b×h1.47m×0.74m.0.22mにおける100リットルの培地において、水道水における2のBWR-3において増殖させた。増殖速度を、最大16日間分光光度的に540nmでのOD測定した。16日後;細胞集団を、H3PO4を使用して、pH調整pH4.5によって安定させ、その後、脱水した細胞を日光で乾燥させた。脂質を、乾燥させたバイオマスから、クロロホルム:メタノール2:1を使用して抽出し、溶媒の蒸発後、総脂質を得た。得られたバイオマスは、100リットルにおいて380.12グラムであり、90.53グラムすなわち23.81の細胞乾燥重量の脂質含有量を有していた。例25クロレラバリアビリスを、540nmでの0.6ODの10の接種物とともに、覆いのないプラスチックタンクl×b×h1.47m×0.74m.0.22mにおける100リットルの培地において、海水:水道水1:2における2のBWR-3において増殖させた。増殖速度を、最大16日間分光光度的に540nmでのOD測定した。16日後;細胞集団を、H3PO4を使用して、pH調整pH4.5によって安定させ、その後、脱水した細胞を日光で乾燥させた。脂質を、乾燥させたバイオマスから、クロロホルム:メタノール2:1を使用して抽出し、溶媒の蒸発後、総脂質を得た。得られたバイオマスは、100リットルにおいて440.01グラムであり、150.61グラムすなわち34.23の細胞乾燥重量の脂質含有量を有していた。"