"卵黄溶液からIgYを分離精製するにあたり、脂質及びリポタンパク質を除去するための前処理工程として、卵黄溶液にポリエチレングリコールを終濃度1~2になるように添加して、遠心により上層部上清部分と沈殿部分に分離させ、その上層部を回収する工程を設けることを特徴とする、卵黄溶液からIgYを分離精製する方法。前記ポリエチレングリコールとして、ポリエチレングリコール粉末をリン酸緩衝液に溶解して40~60のポリエチレングリコール溶液に調整したものを用いることを特徴とする、請求項1に記載の方法。卵黄溶液からIgYを分離精製する方法であって、下記の1及び2の工程を含む方法;1卵黄溶液にポリエチレングリコールを終濃度1~2になるように添加して、遠心により上層部上清部分と沈殿部分に分離させ、その上層部を回収する工程、2硫酸アンモニウムを終濃度40になるように加えて遠心し、二層分離させ、その上層部を回収する工程。工程1で用いるポリエチレングリコールとして、ポリエチレングリコール粉末をリン酸緩衝液に溶解して40~60のポリエチレングリコール溶液に調整したものを用いることを特徴とする、請求項3に記載の方法。本発明の課題は、鳥類など卵黄から、簡便かつ迅速に高精製度のIgY抗体を高収量で精製する手法に関するものである。本発明者等は、従来のIgY精製法を詳細に検討したところ、精製に要する時間が長くかかる欠点も、精製度が低いという欠点のいずれもIgYを特異的に分離するにプロセスに起因するのではないか、という推論をたて、分離プロセスについて鋭意研究を重ねた結果、従来のIgY精製法を飛躍的に改善する基本プロトコールを開発するに至った。すなわち、本発明は、卵黄からのIgY精製に関する基本プロトコールに係るものであり、具体的には、卵黄成分を分離する薬剤を効率的に組み合わせる工程を加えることにより、IgYが高精度で分離されるだけでなく、より短時間に簡便な作業で高収量の精製が可能であるとの知見を得ることができた。そして、さらに研究を進め、分離物質として特にポリエチレングリコールPEGと硫酸アンモニウムを組み合わせた場合には、精製効率が、他の精製法と比較して全く予想外に飛躍的に高まることを見いだした。以上の方法により、高精製度でIgYを高収量に精製可能であることを確認し、本発明を完成させた。本発明は以下のとおりである。1卵黄溶液からIgYを分離精製するにあたり、脂質及びリポタンパク質を除去するための前処理工程として、卵黄溶液にポリエチレングリコールを終濃度1~2になるように添加して、遠心により上層部上清部分と沈殿部分に分離させ、その上層部を回収する工程を設けることを特徴とする、卵黄溶液からIgYを分離精製する方法。2前記ポリエチレングリコールとして、ポリエチレングリコール粉末をリン酸緩衝液に溶解して40~60のポリエチレングリコール溶液に調整したものを用いることを特徴とする、前記1に記載の方法。3卵黄溶液からIgYを分離精製する方法であって、下記の1及び2の工程を含む方法;1卵黄溶液にポリエチレングリコールを終濃度1~2になるように添加して、遠心により上層部上清部分と沈殿部分に分離させ、その上層部を回収する工程、2硫酸アンモニウムを終濃度40になるように加えて遠心し、二層分離させ、その上層部を回収する工程。4工程1で用いるポリエチレングリコールとして、ポリエチレングリコール粉末をリン酸緩衝液に溶解して40~60のポリエチレングリコール溶液に調整したものを用いることを特徴とする、請求項3に記載の方法。本発明のIgY精製法によれば、従来困難であった卵黄からの極めて高精製度IgY精製が簡便に行えるようになる。また、本法によれば、従来法と比較して、分離用の薬剤が少量ですみ、大量の水で希釈する必要もないため、最終的な精製物が高濃度で得られる。したがって、IgY抗体を極めて効率的、かつ短時間、安価に提供でき、これらを通じて医薬あるいは化粧品その他の分野において大いに貢献できる。1.本発明のIgY抗体の採取源と免疫法本発明のIgY精製法は、ニワトリ、アヒル、ダチョウなどの鳥類のみならず爬虫類、両生類など、IgY抗体を産生する動物由来の卵黄からのIgY精製に適用できる。鳥類の卵黄中には、親鳥が自然に獲得した免疫からの移行抗体としてのIgYをもともと大量に含んでいるため、特別な免疫を行わなくてもIgYを採取できる。細菌、ウイルスなど各種の抗原に対するIgYを大量に取得する目的であれば、当該特定抗原による免疫は必要となる。その場合、産卵する親鳥に対して注射または経口投与などにより人工的に1~2週間ごとに数回過免疫することで、最初の免疫から約30~45日後には、産卵された卵の卵黄中に特定抗原に対する抗体IgYが大量に産生される。2.本発明のIgY精製法以下、本発明のIgY精製法を、典型的な鳥類卵黄であるニワトリ卵黄の場合について、具体的に説明する。1ニワトリ卵黄溶液の調整本発明において、卵黄溶液というとき、卵白及び卵黄表面の薄膜が除去され、かつ緩衝液を含み均一な状態の卵黄水溶液を指す。例えば、ニワトリ卵から、卵白を可能な限り取り除き、卵黄のみを回収し、この卵黄に20mMリン酸バッファーpH7.5を加え、バッファー内で卵黄を包む薄膜を取り除き、攪拌子で均一な溶液になるまで攪拌する。2脂質及びリポタンパク質の除去方法本発明における脂質及びリポタンパク質の除去方法は、卵黄溶液に、40~60ポリエチレングリコールを含有させたリン酸緩衝溶液を、ポリエチレングリコールの最終濃度が1~2、好ましくは1になるように加え、均一溶液を得る。次いで、遠心分離後上清を回収する。加えるポリエチレングリコールの分子量は4000~8000が好ましく、6000が最も望ましい。具体的には、上記1で得られた卵黄溶液に、50ポリエチレングリコール分子量6000を含む20mMリン酸バッファーをポリエチレングリコールの最終濃度が1~2になるように加え、20分間、常温約25°Cで攪拌する。次いで、卵黄のポリエチレングリコール溶液を遠心分離して、上清を回収する。3精製IgYの回収上記2で得られた上清に対し、飽和硫酸アンモニウム液を少量ずつ40飽和溶液になるまで添加し攪拌後、室温で1時間静置する。静置後の溶液を遠心分離し、二層分離した溶液の上層部を最終精製IgYとして回収する。このままでも極めて高い純度で得られているが、さらに高純度に精製する場合は、イオン交換体やゲルろ過などの周知の精製方法が適用でき、特に特定抗原に対する抗体を得たい場合は、アフィニティー精製法などを用いればよい。以下に実施例を示し、本発明を具体的に説明するが、本発明はこれらに限定されるものではない。実施例1卵黄溶液の調製卵白を除去した卵黄をキムタオル上でゆっくりと転がし、卵黄表面上に残っている付着物を除去した後、卵黄をビーカーに入れ、卵黄重量を測定した卵黄1個あたり約16g。卵黄1個に対して4倍容量の20mMリン酸ナトリウムバッファーpH7.5を加え、ピンセットを使用して卵黄を包む薄膜を丁寧に取り除き、攪拌子を入れ、均一な溶液になるまで常温で攪拌し、1個分の卵黄16gを含有する80mLの卵黄溶液を得た。実施例2ポリエチレングリコールによる脂質リポタンパク質の除去得られた卵黄溶液80mLに対し、50ポリエチレングリコール分子量6000液を終濃度1になるように加え、20分間、常温で泡立たないよう攪拌し、攪拌した卵黄溶液約82mLを遠心分離10000G、25分、室温して、上清と沈殿物に分離させ上清部分を回収した約70mL。実施例3飽和硫酸アンモニウム液によるIgYの回収回収した上清約70mLに、飽和硫酸アンモニウム液を少量ずつ40飽和溶液になるまで添加し攪拌後、室温で1時間静置する。静置後の溶液を遠心分離3000rpm、20分、室温し、二層分離した上層部を精製IgYとして得た。卵1個の卵黄から得られたIgY量は116.2mg回収率19.9、精製度96であった。比較例1Akita法を用いたIgYの回収比較として、脂質及びリポタンパク質の除去工程を、本発明のポリエチレングリコール処理実施例2に代えて、Akita法非特許文献5に従って大量の蒸留水処理を行った。実施例1と同様の処理をした1個分の卵黄約16gに7倍容量の蒸留水を加え懸濁したのち、1晩静置したものを次の日遠心した。その上清を回収して、実施例3と同様の手法でアンモニウムサルフェートを添加し、1時間静置後の溶液を遠心し、沈殿物をIgY精製物最終回収物として回収した。比較例2デキストランサルフェート法を用いたIgYの回収比較として、脂質及びリポタンパク質の除去工程を、本発明のポリエチレングリコール処理実施例2に代えて、デキストランサルフェート法非特許文献4に従ってデキストランサルフェート処理を行った。実施例1と同様の処理をした1個分の卵黄約16gを3倍容量のTBS緩衝液20mMトリス塩酸pH7.5、0.15MNaClで懸濁したのち、10デキストランサルフェート溶液を1濃度になるよう加え、さらに塩化カルシウム溶液を120mMになるよう加え攪拌後、1時間静置したものを遠心した。その上清を回収して、実施例3と同様の手法でアンモニウムサルフェートを添加し、1時間静置後の溶液を遠心し、沈殿物をIgY精製物最終回収物として回収した。実施例4IgYの回収量純度の比較得られたIgYの精製度を確認するため、SDSポリアクリルアミドゲル電気泳動を行った。まず、実施例3で調製したIgY1μg分を等量のサンプルバッファー{0.125Mトリス塩酸バッファーpH6.8、10メルカプトエタノール、4SDS、20グリセロール、0.01ブロモフェノルブルー}と混合し、95°C、5分加熱処理した後、5~20SDSポリアクリルアミドグラジエントゲル{スーパーセップエース、Wako}にアプライし、20mA、80分の定電流で泳動した。泳動後のゲルを蒸留水に浸し30分洗浄した後、蒸留水を廃棄し、タンパク質染色液であるBio-SafeCoomacie{Bio-Rad社}を30ml加え1時間染色した。染色後、染色液を廃棄し、蒸留水を300ml加え、洗浄した。洗浄は、蒸留水を3回交換して2時間行った。また、回収したIgYはQuickStartプロテインアッセイ{Bio-Rad社}を用いて、キットに添付された説明書に従い求めた。電気泳動後、染色したゲルを図2に示す。図2において、本発明における、ポリエチレングリコールを添加し遠心した後の上清レーン1、さらに飽和硫酸アンモニウム液を添加し遠心した後の上層レーン2及び下層レーン3の電気泳動を示す。また、比較例1レーン4,5及び比較例2レーン6,7で得られた分離物も同時に電気泳動した。各精製法におけるIgY精製物最終回収物は、卵黄1/150,000個分から得られた最終産物に相当する。以上の結果、蒸留水のみで懸濁し遠心した上清レーン番号4よりも、ポリエチレングリコールを添加し遠心した上清レーン番号1のほうが狭雑タンパク質が除かれており、精製IgYも高精製であることが判る。また最終的に得られたIgYの量矢印で示したバンドは、各精製方法でほぼ同量であることが判る。これらの各スポットを切り出してそれぞれの量を測定し、本発明と、上記各比較例を下記の表1としてまとめた。さらに、図3としてA回収量、B精製度を図示した。これらの結果によると、回収量はAkita法を脂質及びリポタンパク質の除去のための前処理として用いた比較例1が最も高かったが、精製度は本発明の最終回収物には及ばない。本発明は、前処理として高価なデキストランサルフェートを用いるデキストランサルフェート法を用いた比較例2と同等程度の精製度が得られ、安価でかつ簡便に高精製度が得られることが確認できた。"