"以下の工程を含むことを特徴とする、試料中の線維芽細胞増殖因子-23以下、FGF-23と記すの測定方法。1試料中のFGF-23を、水性媒体中で、磁性粒子、FGF-23に結合する第1抗体若しくはそのフラグメント、及び、FGF-23に結合する第2抗体若しくはそのフラグメントと反応させ、磁性粒子上に、FGF-23に結合する第1抗体若しくはそのフラグメント、FGF-23、及び、FGF-23に結合する第2抗体若しくはそのフラグメントからなる免疫複合体を生成させる工程;2工程1後の反応混合物中の磁性粒子を磁力により集めて、磁力により集められた磁性粒子とそれ以外の成分とを分離する工程;及び、3工程2で分離された磁性粒子上の免疫複合体を測定する工程。第2抗体が、標識化された抗体である請求項1記載の測定方法。標識化された抗体が、アルカリホスファターゼ標識抗体である請求項2記載の測定方法。工程3の磁性粒子上の免疫複合体の測定が、化学発光の測定により行われる、請求項1~3のいずれかに記載の測定方法。試料が、血清又は血漿である請求項1~4のいずれかに記載の測定方法。磁性粒子、FGF-23に結合する第1抗体若しくはそのフラグメント、及び、FGF-23に結合する第2抗体若しくはそのフラグメントを含有することを特徴とする、試料中のFGF-23測定試薬。第2抗体が、標識化された抗体である請求項6記載の測定試薬。標識化された抗体が、アルカリホスファターゼ標識抗体である請求項7記載の測定試薬。さらに、化学発光測定試薬を含む請求項6~8のいずれかに記載の測定試薬。試料が、血清又は血漿である請求項6~9のいずれかに記載の測定試薬。本発明の目的は、高感度で、測定範囲の広い、試料中のFGF-23の測定方法及び測定試薬を提供することにある。本発明者らは、上記課題を解決すべく鋭意検討した結果、磁性粒子を担体として用いる免疫測定法により、高感度で、測定範囲の広い、FGF-23の測定が可能となる、という知見を見出し、本発明を完成した。すなわち、本発明は、以下の[1]~[10]に関する。[1]以下の工程を含むことを特徴とする、試料中のFGF-23の測定方法。1試料中のFGF-23を、水性媒体中で、磁性粒子、FGF-23に結合する第1抗体若しくはそのフラグメント、及び、FGF-23に結合する第2抗体若しくはそのフラグメントと反応させ、磁性粒子上に、FGF-23に結合する第1抗体若しくはそのフラグメント、FGF-23、及び、FGF-23に結合する第2抗体若しくはそのフラグメントからなる免疫複合体を生成させる工程;2工程1後の反応混合物中の磁性粒子を磁力により集めて、磁力により集められた磁性粒子とそれ以外の成分とを分離する工程;及び、3工程2で分離された磁性粒子上の免疫複合体を測定する工程。[2]第2抗体が、標識化された抗体である[1]記載の測定方法。[3]標識化された抗体が、アルカリホスファターゼ標識抗体である[2]記載の測定方法。[4]工程3の磁性粒子上の免疫複合体の測定が、化学発光の測定により行われる、[1]~[3]のいずれかに記載の測定方法。[5]試料が、血清又は血漿である[1]~[4]のいずれかに記載の測定方法。[6]磁性粒子、FGF-23に結合する第1抗体若しくはそのフラグメント、及び、FGF-23に結合する第2抗体若しくはそのフラグメントを含有することを特徴とする、試料中のFGF-23測定試薬。[7]第2抗体が、標識化された抗体である[6]記載の測定試薬。[8]標識化された抗体が、アルカリホスファターゼ標識抗体である[7]記載の測定試薬。[9]さらに、化学発光測定試薬を含む[6]~[8]のいずれかに記載の測定試薬。[10]試料が、血清又は血漿である[6]~[9]のいずれかに記載の測定試薬。本発明により、高感度で、測定範囲の広い、試料中のFGF-23の測定方法及び測定試薬が提供される。測定方法本発明の試料中のFGF-23の測定方法は、磁性粒子を担体として用いる、サンドイッチ法による試料中のFGF-23の免疫測定法であり、以下の工程を含む測定方法である。1試料中のFGF-23を、水性媒体中で、磁性粒子、FGF-23に結合する第1抗体若しくはそのフラグメント、及び、FGF-23に結合する第2抗体若しくはそのフラグメントと反応させ、磁性粒子上に、FGF-23に結合する第1抗体若しくはそのフラグメント、FGF-23、及び、FGF-23に結合する第2抗体若しくはそのフラグメントからなる免疫複合体を生成させる工程;2工程1後の反応混合物中の磁性粒子を磁力により集めて、磁力により集められた磁性粒子とそれ以外の成分とを分離する工程;及び、3工程2で分離された磁性粒子上の免疫複合体を測定する工程。<工程1>工程1において、試料中のFGF-23は、水性媒体中で、磁性粒子、FGF-23に結合する第1抗体若しくはそのフラグメント、及び、FGF-23に結合する第2抗体若しくはそのフラグメントと反応し、磁性粒子上に、FGF-23に結合する第1抗体若しくはそのフラグメント、FGF-23、及び、FGF-23に結合する第2抗体若しくはそのフラグメントからなる免疫複合体が生成する。ここで、試料中のFGF-23と、磁性粒子、FGF-23に結合する第1抗体若しくはそのフラグメント、及び、FGF-23に結合する第2抗体若しくはそのフラグメントとの反応は、磁性粒子上に、FGF-23に結合する第1抗体若しくはそのフラグメント、FGF-23、及び、FGF-23に結合する第2抗体若しくはそのフラグメントからなる免疫複合体が生成する限りは、いかなる反応でもよく、例えば試料中のFGF-23と、磁性粒子、及び、FGF-23に結合する第1抗体若しくはそのフラグメントとを反応させて、磁性粒子上に、FGF-23に結合する第1抗体もしくはそのフラグメントとFGF-23との免疫複合体を生成させた後に、FGF-23に結合する第2抗体若しくはそのフラグメントを反応させても、試料中のFGF-23と、磁性粒子、FGF-23に結合する第1抗体若しくはそのフラグメント、及び、FGF-23に結合する第2抗体若しくはそのフラグメントとを、同時に反応させてもよい。磁性粒子上に、FGF-23に結合する第1抗体もしくはそのフラグメントとFGF-23との免疫複合体を生成させた後に、FGF-23に結合する第2抗体若しくはそのフラグメントを反応させる場合には、当該免疫複合体を生成させた後に洗浄工程を設けることもできる。工程1においてFGF-23に結合する第1抗体若しくはそのフラグメントと磁性粒子とは試料中のFGF-23と反応させる前に予め、結合させておいてもよい。FGF-23に結合する第1抗体若しくはそのフラグメントの磁性粒子への結合は、物理吸着による結合、リンカーを介する結合、抗体のFc領域-Fc領域と結合する抗体、アビジン類アビジン、ストレプトアビジン、ニュートラアビジン等-ビオチン等の2つの親和性物質間の相互作用を利用した結合等が挙げられる。抗体のFc領域と、Fc領域と結合する抗体との相互作用を利用する場合、例えば磁性粒子上に固定化したFc領域と結合する抗体と、第1抗体若しくはそのフラグメントとの相互作用により、第1抗体若しくはそのフラグメントを磁性粒子上に結合させることができる。アビジン類とビオチンとの相互作用を利用する場合、例えば磁性粒子上に固定化したアビジン類と、ビオチン結合第1抗体若しくはそのフラグメント中のビオチンとの相互作用により、第1抗体若しくはそのフラグメントを磁性粒子上に結合させることができる。反応溶液中の磁性粒子の濃度は、本発明のFGF-23の測定を可能とする濃度であれば特に限定はなく、通常、01~10mgmLである。反応温度は、本発明のFGF-23の測定を可能とする温度であれば特に限定はなく、通常、0~50°Cであり、4~45°Cが好ましく、20~40°Cが特に好ましい。反応時間は、本発明のFGF-23の測定を可能とする時間であれば特に限定はなく、通常、5分間~1時間であり、5~20分間が好ましい。FGF-23に結合する第1抗体若しくはそのフラグメントが予め、結合した磁性粒子を用いる場合、FGF-23に結合する第1抗体若しくはそのフラグメントが結合した磁性粒子は、本発明のFGF-23の測定方法を可能とする限り、いかなる方法によって製造することができる。例えば01~10mgmLの磁性粒子の懸濁液に、01~10μgmLの第1抗体若しくはそのフラグメント溶液を添加し、37°Cで5分間~1時間反応させることにより、第1抗体若しくはそのフラグメントが結合した磁性粒子を製造することができる。また、工程1において、試料中のFGF-23とFGF-23に結合する第1抗体若しくはそのフラグメント、及び、磁性粒子とからなる免疫複合体を生成させた後に、当該免疫複合体にFGF-23に結合する第2抗体若しくはそのフラグメントを結合させる場合、当該第2抗体を結合させる前に免疫複合体が結合した磁性粒子の洗浄工程を設けることができる。磁性粒子の洗浄は、磁性粒子上にFGF-23に結合する第1抗体若しくはそのフラグメント、FGF-23、及び、FGF-23に結合する第2抗体若しくはそのフラグメントからなる免疫複合体を生成させることができる限りは、いかなる洗浄であってよく、例えば磁性粒子上にFGF-23とFGF-23に結合する第1抗体若しくはそのフラグメントとの免疫複合体を生成させる反応後の反応混合物の中から磁性粒子以外の成分を除去し、磁性粒子が残った反応容器に洗浄液を添加し、磁性粒子を洗浄する方法や、反応後の反応混合物に洗浄液を添加すると同時に、磁性粒子以外の成分を除去し、磁性粒子を洗浄する方法等が挙げられる。磁性粒子以外の成分の除去は、例えば磁力により磁性粒子を集めて、残った成分を吸引することにより行うことができる。洗浄液としては、本発明のFGF-23の測定を可能とする洗浄液であれば特に制限はなく、例えば後述の水性媒体、後述の水性媒体に界面活性剤が添加された水性媒体等が挙げられる。界面活性剤としては、例えばツイーンTween20等の非イオン性界面活性剤等が挙げられる。尚、工程1において、塩類を共存させてもよい。塩類としては、本発明のFGF-23の測定方法を可能とする塩類であれば特に制限はなく、例えば塩化リチウム、塩化ナトリウム、塩化カリウム、塩化カルシウム、塩化マグネシウム、塩化アンモニウム、臭化リチウム、臭化ナトリウム、臭化カリウム、臭化カルシウム、臭化マグネシウム、臭化アンモニウム等が挙げられ、塩化ナトリウムが好ましい。塩類の反応中の濃度は、本発明の測定方法を可能とする濃度であれば特に制限はなく、例えば40~400mmolLであり、70~250mmolLが好ましい。また、工程1においては、金属イオン、糖類、防腐剤、蛋白質、界面活性剤、蛋白質安定化剤等を共存させることができる。金属イオンとしては、例えばマグネシウムイオン、マンガンイオン、亜鉛イオン等が挙げられる。糖類としては、例えばマンニトール、ソルビトール等が挙げられる。防腐剤としては、例えばアジ化ナトリウム、抗生物質ストレプトマイシン、ペニシリン、ゲンタマイシン等、バイオエース、プロクリン300等が挙げられる。蛋白質としては、例えばウシ血清アルブミンBSA、ウシ胎児血清FBS、カゼイン、ブロックエース大日本製薬社製等が挙げられる。界面活性剤としては、例えば陽イオン性界面活性剤、陰イオン性界面活性剤、両性界面活性剤、非イオン性界面活性剤等が挙げられる。蛋白質安定化剤としては、例えばペルオキシダーゼ安定化緩衝液、アルカリホスファターゼ安定化緩衝液等が挙げられる。<工程2>工程2において、工程1後の磁性粒子、すなわち、FGF-23に結合する第1抗体若しくはそのフラグメント、FGF-23、及び、FGF-23に結合する第2抗体若しくはそのフラグメントからなる免疫複合体が結合した磁性粒子は磁力によって集められ、磁力により集められた磁性粒子は、それ以外の成分と分離される。磁性粒子を集めるための磁力は、本発明のFGF-23の測定を可能とする磁力であれば特に制限はない。磁力により集められた磁性粒子と、それ以外の成分との分離は、本発明のFGF-23の測定を可能とする分離であれば特に制限はない。また、工程2の後に、又は、工程2と同時に、FGF-23に結合する第1抗体若しくはそのフラグメント、FGF-23、及び、FGF-23に結合する第2抗体若しくはそのフラグメントからなる免疫複合体を結合した磁性粒子を洗浄する工程を含んでいてもよい。磁性粒子の洗浄は、例えば前述の方法等によって行うことができる。<工程3>次いで、工程3において、工程2により分離された磁性粒子上の免疫複合体を測定することにより、試料中のFGF-23を測定することができる。免疫複合体の測定方法としては、例えば、以下の方法等が挙げられる。FGF-23に結合する第2抗体若しくはそのフラグメントが標識化されていない場合第2抗体若しくはそのフラグメントに結合する第3抗体若しくはそのフラグメントに標識が結合した標識化第3抗体若しくはそのフラグメントを、第1抗体若しくはそのフラグメント、FGF-23、及び、第2抗体若しくはそのフラグメントからなる免疫複合体が結合している磁性粒子と反応させて、磁性粒子上に、第1抗体若しくはそのフラグメント、FGF-23、第2抗体若しくはそのフラグメント、及び、第3抗体若しくはそのフラグメントからなる免疫複合体を形成させ、該免疫複合体中の標識を測定することにより、分離された磁性粒子上の免疫複合体を測定することができる。第2抗体若しくはそのフラグメントに結合する第3抗体若しくはそのフラグメントとしては、例えば第2抗体のFc領域に結合する抗体若しくはそのフラグメント等が挙げられる。標識の測定は、分離された磁性粒子上の免疫複合体の測定を可能とする方法であれば、特に制限はなく、例えば化学発光の測定、蛍光の測定、吸光度の測定等が挙げられるが、化学発光の測定が好ましい。FGF-23に結合する第2抗体若しくはそのフラグメントが標識化されている場合磁性粒子上に形成された、第1抗体若しくはそのフラグメント、FGF-23、及び、標識化されたFGF-23に結合する第2抗体若しくはそのフラグメントからなる免疫複合体中の標識を測定することにより、分離された磁性粒子上の免疫複合体を測定することができる。標識の測定は、分離された磁性粒子上の免疫複合体の測定を可能とする方法であれば、特に制限はなく、例えば化学発光の測定、蛍光の測定、吸光度の測定等が挙げられるが、化学発光の測定が好ましい。化学発光の測定化学発光の測定は、以下の方法等によって行うことができる。標識が酵素である場合標識が酵素である場合には、例えばその酵素と反応して光を生成する基質を標識化抗体若しくはフラグメントに作用させ、生成した光hνの強度を発光強度計等で測定することにより行うことができる。酵素としては、その酵素の基質と反応し、光を生成し得るものであれば特に制限はなく、例えばアルカリホスファターゼ、ペルオキシダーゼ、β-D-ガラクトシダーゼ、ルシフェラーゼ等が挙げられる。酵素としてアルカリホスファターゼを用いる場合、アルカリホスファターゼと反応して光を生成するアルカリホスファターゼの基質としては、例えば3-2-スピロアダマンタン-4-メトキシ-4-3-ホスホリルオキシフェニル-1,2-ジオキセタン二ナトリウム塩AMPPD、2-クロロ-5-{4-メトキシスピロ[1,2-ジオキセタン-3,2-5-クロロトリシクロ[3.3.1.13,7]カン]-4-イル}フェニルホスフェート二ナトリウム塩CDP-StarTM、3-{4-メトキシスピロ[1,2-ジオキセタン-3,2-5-クロロトリシクロ[3.3.1.13,7]デカン]-4-イル}フェニルホスフェート二ナトリウム塩CSPDTM、[10-メチル-910H-アクリジニルイデン]フェノキシメチルリン酸二ナトリウム塩LumigenTMAPS-5、9-4-クロロフェニルチオホスホリルオキシメチリデン-10-メチルアクリダン二ナトリウム塩等が挙げられる。酵素として、ペルオキシダーゼを用いる場合、ペルオキシダーゼと反応して光を生成するペルオキシダーゼの基質としては、例えば過酸化水素と発光化合物との組み合わせ等が挙げられる。発光化合物としては、例えば、ルミノール化合物、ルシゲニン化合物等が挙げられる。酵素として、β-D-ガラクトシダーゼを用いる場合、β-D-ガラクトシダーゼと反応して光を生成するβ-D-ガラクトシダーゼの基質としては、例えばガラクトン-プラス[GalactonPlus、アプライドバイオシステムズAppliedBiosystems社製]等が挙げられる。酵素として、ルシフェラーゼを用いる場合、ルシフェラーゼと反応して光を生成するルシフェラーゼの基質としては、例えばルシフェリン、セレンテラジン等が挙げられる。標識が発光物質である場合標識が発光物質である場合には、例えば生成した免疫複合体中の発光物質に起因する光の強度を、発光強度計等で測定することにより行うことができる。発光物質としては、本発明の測定を可能とする発光物質であれば特に制限はなく、例えばアクリジニウムおよびその誘導体、ルテニウム錯体化合物、ロフィン等が挙げられる。蛍光の測定蛍光の測定は、以下の方法等によって行うことができる。標識が酵素である場合標識が酵素である場合には、例えばその酵素と反応して蛍光を生成する基質を標識化抗体若しくはフラグメントに作用させ、生成した蛍光の強度を蛍光強度計等で測定することにより行うことができる。酵素としては、その酵素の基質と反応し、蛍光を生成し得るものであれば特に制限はなく、例えばペルオキシダーゼ、β-D-ガラクトシダーゼ、β-グルクロニダーゼ等が挙げられる。酵素として、ペルオキシダーゼを用いる場合、ペルオキシダーゼと反応して蛍光を生成するペルオキシダーゼの基質としては、例えば過酸化水素と蛍光化合物との組み合わせ等が挙げられる。蛍光化合物としては、例えば、4-ヒドロキシフェニル酢酸、3-4-ヒドロキシフェニルプロピオン酸、クマリン等が挙げられる。酵素として、β-D-ガラクトシダーゼを用いる場合、β-D-ガラクトシダーゼと反応して蛍光を生成するβ-D-ガラクトシダーゼの基質としては、例えば4-メチルウンベリフェリル-β-D-ガラクトピラノシド又はその類似化合物等が挙げられる。酵素として、β-グルクロニダーゼを用いる場合、β-グルクロニダーゼと反応して蛍光を生成するβ-グルクロニダーゼの基質としては、例えばTokyoGreenTM-βGluU積水メディカル社製等が挙げられる。標識が蛍光物質である場合標識が蛍光物質である場合には、例えば生成した免疫複合体中の蛍光物質に起因する蛍光の強度を、蛍光強度計等で測定することにより行うことができる。蛍光物質としては、本発明の測定を可能とする蛍光物質であれば特に制限はなく、例えばFITCフルオレッセインイソチオシアナート、RITCローダミンB-イソチオシアナート、quantumdotScience281201620181998、フィコエリスリン等のフィコビリ蛋白質、GFPGreenfluorescentProtein、RFPRedfluorescentProtein、YFPYellowfluorescentProtein、BFPBluefluorescentProtein等が挙げられる。吸光度の測定吸光度の測定は、以下の方法等によって行うことができる。標識が酵素である場合標識が酵素である場合には、例えばその酵素と反応して色素を生成する基質を標識化抗体若しくはフラグメントに作用させ、生成した色素の吸光度を分光光度計やマルチウェルプレートリーダー等で測定することにより行うことができる。酵素としては、その酵素の基質と反応し、色素を生成し得るものであれば特に制限はなく、例えばペルオキシダーゼ等が挙げられる。酵素として、ペルオキシダーゼを用いる場合、ペルオキシダーゼと反応して色素を生成するペルオキシダーゼの基質としては、例えば過酸化水素と酸化発色型色原体との組み合わせ等が挙げられる。酸化発色型色原体としては、例えば、ロイコ型色原体、酸化カップリング発色型色原体等が挙げられる。ロイコ型色原体は、過酸化水素およびペルオキシダーゼ等の過酸化活性物質の存在下、単独で色素へ変換される物質である。具体的には、テトラメチルベンジジン、o-フェニレンジアミン、10-N-カルボキシメチルカルバモイル-3,7-ビスジメチルアミノ-10H-フェノチアジンCCAP、10-N-メチルカルバモイル-3,7-ビスジメチルアミノ-10H-フェノチアジンMCDP、N-カルボキシメチルアミノカルボニル-4,4’-ビスジメチルアミノジフェニルアミンナトリウム塩DA-64、4,4’-ビスジメチルアミノジフェニルアミン、ビス3-ビス4-クロロフェニルメチル-4-ジメチルアミノフェニルアミンBCMA等が挙げられる。酸化カップリング発色型色原体は、過酸化水素およびペルオキシダーゼ等の過酸化活性物質の存在下、2つの化合物が酸化的カップリングして色素を生成する物質である。2つの化合物の組み合わせとしては、カプラーとアニリン類トリンダー試薬との組み合わせ、カプラーとフェノール類との組み合わせ等があげられる。カプラーとしては、例えば4-アミノアンチピリン4-AA、3-メチル-2-ベンゾチアゾリノンヒドラジン等があげられる。アニリン類としては、N-3-スルホプロピルアニリン、N-エチル-N-2-ヒドロキシ-3-スルホプロピル-3-メチルアニリンTOOS、N-エチル-N-2-ヒドロキシ-3-スルホプロピル-3,5-ジメチルアニリンMAOS、N-エチル-N-2-ヒドロキシ-3-スルホプロピル-3,5-ジメトキシアニリンDAOS、N-エチル-N-3-スルホプロピル-3-メチルアニリンTOPS、N-2-ヒドロキシ-3-スルホプロピル-3,5-ジメトキシアニリンHDAOS、N,N-ジメチル-3-メチルアニリン、N,N-ビス3-スルホプロピル-3,5-ジメトキシアニリン、N-エチル-N-3-スルホプロピル-3-メトキシアニリン、N-エチル-N-3-スルホプロピルアニリン、N-エチル-N-3-スルホプロピル-3,5-ジメトキシアニリン、N-3-スルホプロピル-3,5-ジメトキシアニリン、N-エチル-N-3-スルホプロピル-3,5-ジメチルアニリン、N-エチル-N-2-ヒドロキシ-3-スルホプロピル-3-メトキシアニリン、N-エチル-N-2-ヒドロキシ-3-スルホプロピルアニリン、N-エチル-N-3-メチルフェニル-N’-サクシニルエチレンジアミンEMSE、N-エチル-N-3-メチルフェニル-N’-アセチルエチレンジアミン、N-エチル-N-2-ヒドロキシ-3-スルホプロピル-4-フルオロ-3,5-ジメトキシアニリンF-DAOS等があげられる。フェノール類としては、フェノール、4-クロロフェノール、3-メチルフェノール、3-ヒドロキシ-2,4,6-トリヨード安息香酸HTIB等があげられる。磁性粒子上に生成した免疫複合体の測定における測定値に基づいた、試料中のFGF-23濃度の決定は、例えば、以下の方法で行うことができる。既知濃度のFGF-23を用いて上記工程1から工程3を行い、FGF-23の濃度と測定値標識由来の情報量との関係を表す検量線を作成し、次いで、測定すべき試料を用いて測定を行い、得られた測定値を予め作成した検量線に照らし合わせて、測定すべき試料中のFGF-23濃度を決定する。試料本発明における試料としては、本発明のFGF-23の測定を可能とする試料であれば特に制限はなく、例えば全血、血漿、血清、髄液、唾液、羊水、尿、汗、膵液等が挙げられるが、血漿、血清等が好ましい。水性媒体本発明において使用される水性媒体としては、本発明のFGF-23の測定を可能とする水性媒体であれば特に制限はなく、例えば脱イオン水、蒸留水、緩衝液等があげられ、緩衝液が好ましい。緩衝液の調製に使用される緩衝剤としては、緩衝能を有するものならば特に限定されないが、pH1~11の例えば乳酸緩衝剤、クエン酸緩衝剤、酢酸緩衝剤、コハク酸緩衝剤、フタル酸緩衝剤、リン酸緩衝剤、トリエタノールアミン緩衝剤、ジエタノールアミン緩衝剤、リジン緩衝剤、バルビツール緩衝剤、イミダゾール緩衝剤、リンゴ酸緩衝剤、シュウ酸緩衝剤、グリシン緩衝剤、ホウ酸緩衝剤、炭酸緩衝剤、グリシン緩衝剤、グッド緩衝剤等があげられる。グッド緩衝剤としては、例えば2-モルホリノエタンスルホン酸MES緩衝剤、ビス2-ヒドロキシエチルイミノトリスヒドロキシメチルメタンBis-Tris緩衝剤、トリスヒドロキシメチルアミノメタンTris緩衝剤、N-2-アセトアミドイミノ二酢酸ADA緩衝剤、ピペラジン-N,N’-ビス2-エタンスルホン酸PIPES緩衝剤、2-[N-2-アセトアミドアミノ]エタンスルホン酸ACES緩衝剤、3-モルホリノ-2-ヒドロキシプロパンスルホン酸MOPSO緩衝剤、2-[N,N-ビス2-ヒドロキシエチルアミノ]エタンスルホン酸BES緩衝剤、3-モルホリノプロパンスルホン酸MOPS緩衝剤、2-{N-[トリスヒドロキシメチルメチル]アミノ}エタンスルホン酸TES緩衝剤、N-2-ヒドロキシエチル-N’-2-スルホエチルピペラジンHEPES緩衝剤、3-[N,N-ビス2-ヒドロキシエチルアミノ]-2-ヒドロキシプロパンスルホン酸DIPSO緩衝剤、2-ヒドロキシ-3-{[N-トリスヒドロキシメチルメチル]アミノ}プロパンスルホン酸TAPSO緩衝剤、ピペラジン-N,N’-ビス2-ヒドロキシプロパン-3-スルホン酸POPSO緩衝剤、N-2-ヒドロキシエチル-N’-2-ヒドロキシ-3-スルホプロピルピペラジンHEPPSO緩衝剤、N-2-ヒドロキシエチル-N’-3-スルホプロピルピペラジンEPPS緩衝剤、[N-トリスヒドロキシメチルメチルグリシン]Tricine緩衝剤、[N,N-ビス2-ヒドロキシエチルグリシン]Bicine緩衝剤、3-[N-トリスヒドロキシメチルメチル]アミノプロパンスルホン酸TAPS緩衝剤、2-N-シクロヘキシルアミノエタンスルホン酸CHES緩衝剤、3-N-シクロヘキシルアミノ-2-ヒドロキシプロパンスルホン酸CAPSO緩衝剤、3-N-シクロヘキシルアミノプロパンスルホン酸CAPS緩衝剤等が挙げられる。磁性粒子本発明における磁性粒子としては、本発明のFGF-23の測定を可能とする磁性粒子であれば特に限定はなく、例えばフェライトで被覆したラテックス、フェライトで被覆したポリマー粒子等が挙げられる。また、抗体の結合を容易にするために、ビオチンと結合する性質を有するアビジン、ニュートラアビジン又はストレプトアビジンを表面に固定化した磁性粒子も使用することができる。磁性粒子の粒径は、特に限定されないが、例えば1μm~6μmであり、好ましくは1μm~3μmである。本発明における磁性粒子としては、市販の磁性粒子を用いることができる。市販の磁性粒子としては、例えばDynabeadsM280Streptavidinダイナル社製、DynabeadsM280Tosylactivatedダイナル社製、DynabeadsMyOneStreptavidinT1ダイナル社製、DynabeadsMyOneTosylactivatedダイナル社製、Estapor、SeraMagMagneticStreptavidinParticles、MAGNOTEXSA等が挙げられる。抗体本発明におけるFGF-23に結合する抗体第1抗体及び第2抗体は、本発明のFGF-23の測定を可能とする抗体であれば特に制限はなく、ポリクローナル抗体、モノクローナル抗体のいずれも使用できるが、モノクローナル抗体が好ましい。また、本発明においては、全長の抗体のみならず、抗体フラグメントを用いることもできる。抗体フラグメントとしては、例えば、抗体をパパイン処理により得られるFab、ペプシン処理により得られるF2、ペプシン処理-還元処理により得られるFab等のFc部分を除去した抗体フラグメント等が挙げられる。磁性粒子として、アビジン、ニュートラアビジン又はストレプトアビジンがその表面に固定化された磁性粒子を用いる場合には、第1抗体にビオチンが結合したビオチン結合第1抗体を用いることができる。本発明において使用されるFGF-23に結合する第1抗体と第2抗体において、それぞれの抗体が結合するFGF-23の部位は同じであっても、異なっていてもよいが、異なっていることが好ましい。本発明において使用される抗体は、FGF-23そのもの、又は、FGF-23中のエピトープに相当するペプチドを抗原として用いて通常の抗体の作製方法により取得することができるが、市販品としても入手可能である。FGF-23に結合する抗体としては、例えばFERMBP7838、FERMBP7839、FERMBP7840、FERMBP8268としてそれぞれ寄託されたハイブリドーマが生産するモノクローナル抗体等が挙げられる。また、本発明のFGF-23の測定方法及び測定試薬において、FGF-23に結合する抗体の代わりに、FGF-23に結合するアプタマー等の、抗体以外の物質を用いることもできる。測定試薬本発明の試料中のFGF-23測定試薬は、本発明の試料中のFGF-23の測定方法に使用することができる。本発明の測定試薬は、磁性粒子、FGF-23に結合する第1抗体若しくはそのフラグメント、及び、FGF-23に結合する第2抗体若しくはそのフラグメントを含有する。FGF-23に結合する第1抗体若しくはそのフラグメントは、磁性粒子に結合されたものを用いてもよい。FGF-23に結合する第1抗体若しくはそのフラグメントが磁性粒子に結合している場合、本発明の測定試薬は、FGF-23に結合する第1抗体若しくはそのフラグメントが結合した磁性粒子、及び、FGF-23に結合する第2抗体若しくはそのフラグメントを含有する。FGF-23に結合する第1抗体若しくはそのフラグメントが磁性粒子に結合していない場合、本発明の測定試薬は、2つの親和性物質のうちの片方が固定化された磁性粒子、2つの親和性物質のうちのもう一方が結合した第1抗体若しくはそのフラグメント、及び、FGF-23に結合する第2抗体若しくはそのフラグメントを含有する。2つの親和性物質の組み合わせとしては、例えばアビジン、ストレプトアビジン、ニュートラアビジン等のアビジン類と、ビオチンとの組み合わせ等が挙げられる。本発明の測定試薬の1態様としては、例えばアビジン類が固定化された磁性粒子、FGF-23に結合する第1抗体若しくはそのフラグメントにビオチンが結合したビオチン結合第1抗体若しくはそのフラグメント、及び、FGF-23に結合する第2抗体若しくはそのフラグメントを含有する測定試薬が挙げられる。第2抗体若しくはそのフラグメントが標識化されている場合には、本発明の測定試薬は、さらに、第1抗体若しくはそのフラグメント、FGF-23、及び、標識化第2抗体若しくはそのフラグメントからなる免疫複合体中の標識化第2抗体若しくはそのフラグメントの測定を可能とする標識測定試薬を含む。標識測定試薬は、生成した当該免疫複合体中の標識化第2抗体若しくはそのフラグメントを測定することができる試薬であれば特に制限はなく、例えば化学発光測定試薬、蛍光測定試薬等が挙げられるが、化学発光測定試薬が好ましい。FGF-23に結合する第2抗体若しくはそのフラグメントが標識化されていない場合には、本発明の測定試薬は、さらに、当該第2抗体若しくはそのフラグメントに結合する第3抗体若しくはそのフラグメントに標識が結合した標識化第3抗体若しくはそのフラグメントと、第1抗体若しくはそのフラグメント、FGF-23、第2抗体若しくはそのフラグメント、及び、標識化第3抗体若しくはそのフラグメントからなる免疫複合体中の標識化第3抗体若しくはそのフラグメントの測定を可能とする標識測定試薬とを含む。第2抗体若しくはそのフラグメントに結合する第3抗体若しくはそのフラグメントとしては、例えば第2抗体のFc領域に結合する抗体若しくはそのフラグメント等が挙げられる。また、当該免疫複合体中の標識化第3抗体若しくはそのフラグメントの測定を可能とする標識測定試薬は、生成した当該免疫複合体中の標識化第3抗体若しくはそのフラグメントを測定することができる試薬であれば特に制限はなく、例えば化学発光測定試薬、蛍光測定試薬、吸光度測定試薬等が挙げられるが、化学発光測定試薬が好ましい。化学発光測定試薬は、特に、標識が酵素である場合に用いられる試薬であり、その酵素と反応して光を生成する酵素の基質を含む試薬等が挙げられる。酵素と、その酵素と反応して光を生成する酵素の基質との組み合わせについては、前述の組み合わせ等が挙げられる。蛍光測定試薬は、特に、標識が酵素である場合に用いられる試薬であり、その酵素と反応して蛍光を生成する酵素の基質を含む試薬等が挙げられる。酵素と、その酵素と反応して蛍光を生成する酵素の基質との組み合わせについては、前述の組み合わせ等が挙げられる。吸光度測定試薬は、特に、標識が酵素である場合に用いられる試薬であり、その酵素と反応して色素を生成する酵素の基質を含む試薬等が挙げられる。酵素と、その酵素と反応して色素を生成する酵素の基質との組み合わせについては、前述の組み合わせ等が挙げられる。本発明の測定試薬において使用される磁性粒子、FGF-23に結合する第1抗体若しくはそのフラグメント、FGF-23に結合する第2抗体若しくはそのフラグメントとしては、例えばそれぞれ前述の磁性粒子、FGF-23に結合する第1抗体若しくはそのフラグメント、FGF-23に結合する第2抗体若しくはそのフラグメント等が挙げられる。また、本発明の測定試薬には、必要に応じて、それぞれ前述の水性媒体、標識酵素の基質、金属イオン、糖類、防腐剤、蛋白質、界面活性剤、蛋白質安定化剤等を含有させてもよい。以下、実施例により本発明を詳細に説明するが、これらは本発明の範囲を何ら限定するものではない。1材料及び測定方法<測定用試料>健常人より得た血清FGF-23濃度が10pgmLの血清;アリエス社より購入を、02BSABovogenBiologicals社製を含むリン酸緩衝化生理食塩水015molL塩化ナトリウムを含有する10mmolLリン酸緩衝液、pH72にてFGF-23濃度が9pgmL、8pgmL、7pgmL、6pgmL、5pgmL、4pgmL、3pgmL、2pgmL、1pgmL、になるように希釈したもの、及び02BSAを含むリン酸緩衝化生理食塩水FGF-23濃度0pgmLを測定用試料に用いた。<磁性粒子懸濁液>磁性粒子として、ストレプトアビジンが結合した市販の磁性粒子DynabeadsMyOneStreptavidinT1;ダイナル社製を用いて、以下の組成からなる磁性粒子懸濁液を調製した。MESpH6.550mmol/Lストレプトアビジン結合磁性粒子0.75mg/mLBSA0.1塩化ナトリウム0.1mol/L<ビオチン結合抗FGF-23抗体とビオチン結合抗FGF-23抗体溶液>第1抗体として、FERMBP7838として寄託されたハイブリドーマが生産する抗FGF-23モノクローナル抗体2C3Bを用いて、当該抗体とNHS-ビオチンとを混合し、37°Cで1時間反応させ、反応後の混合物をセファデックスG25カラムGEヘルスサイエンスジャパン社製に供して未反応のNHS-ビオチンを除去し、ビオチン結合抗FGF-23モノクローナル抗体を調製した。得られたビオチン結合抗FGF-23モノクローナル抗体を用いて、以下の組成からなるビオチン結合抗FGF-23抗体溶液を調製した。MESpH6.550mmol/L抗FGF-23モノクローナル抗体2C3B5μg/mLBSA0.1塩化ナトリウム0.1mol/L<アルカリホスファターゼ標識抗FGF-23抗体フラグメントとアルカリホスファターゼ標識抗FGF-23抗体フラグメント溶液>第2抗体フラグメントとして、FERMBP7839として寄託されたハイブリドーマが生産する抗FGF-23モノクローナル抗体3C1Eをペプシンで消化した後、G3000SWカラム東ソー社製;口径:215mm;長さ:60cmを用いたHPLCシステム日立製作所社製でF2を分離した。得られたF2を2-メルカプトエチルアミン塩酸塩ナカライテスク社製で還元した後、G3000SWカラム東ソー社製;口径:215mm;長さ:60cmを用いたHPLCシステム日立製作所社製でFab’を分離した。得られたFab’とアルカリホスファターゼとを以下の手順により、マレイミド法によって結合させた。マレイミド化試薬SulfoHMCS同仁化学研究所社製を用いて、アルカリホスファターゼをマレイミド化し、反応混合物をセファデックスG25カラムGEヘルスサイエンスジャパン社製に供して未反応のSulfoHMCSを除去し、マレイミド化アルカリホスファターゼを得た。調製したマレイミド化アルカリホスファターゼとFab’とを混合し、アルカリホスファターゼ標識Fab’抗体を作製した。得られたアルカリホスファターゼ標識Fab’抗体を用いて、以下の組成からなるアルカリホスファターゼ標識抗FGF-23抗体フラグメント溶液を調製した。MESpH6.550mmol/Lアルカリホスファターゼ標識抗FGF-23抗体フラグメント5μg/mLBSA0.1塩化ナトリウム0.1mol/L2試料中のFGF-23の測定上記1で調製した測定用試料10μLに、1で調製した磁性粒子懸濁液、ビオチン結合抗FGF-23抗体溶液、及び、アルカリホスファターゼ標識抗FGF-23抗体フラグメント溶液を各30μL加えて攪拌し、37°Cで20分間反応させた。磁性粒子を磁力で集めて、磁性粒子以外の反応溶液を除去すると共に、洗浄液[01ツイーン20を含有する50mmolLMOPS緩衝液]で磁性粒子を5回洗浄した。その後、9-4-クロロフェニルチオホスホリルオキシメチリデン-10-メチルアクリダン二ナトリウム塩を主成分とする発光基質液を100μL加えて攪拌し、生じた発光量を測定した。測定結果を図1に示す。測定系として測定可能な最小濃度を規定する方法として、平均値と標準偏差を用いて統計学的に評価する方法がある。具体的には、0pgmL試料を5重測定した際の平均値2倍の標準偏差2SDよりも、1で調製した試料を5重測定した際の平均値-2倍の標準偏差-2SDが高いRLUとなれば、その試料を検出できる濃度として規定できる。FGF-23濃度が0pgmLである試料を測定した際の発光量の平均2SDは173RLU図1の破線であった。一方、FGF-23濃度が1pgmLである試料を測定した際の発光量の平均-2SDは186RLUであり、0pgmL試料を測定した際の発光量の平均2SDよりも高い値であったことから、1pgmLのFGF-23を測定できることを確認した。よって、この測定法において、FGF-23を検出できる最小濃度は1pgmLであると規定できる。また、図1に示したように、FGF-23が1pgmL以上の濃度では濃度依存的な発光量の増加が見られた。1材料及び測定方法<測定用試料>WO2003057733に記載された方法によって製造したFGF-23を、02BSABovogenBiologicals社製を含むリン酸緩衝化生理食塩水015molL塩化ナトリウムを含有する10mmolLリン酸緩衝液、pH72にてFGF-23濃度が10000pgmL、3000pgmL、1000pgmL、300pgmL、100pgmL、50pgmL、10pgmL、5pgmL、になるように希釈したもの、及び02BSAを含むリン酸緩衝化生理食塩水FGF-23濃度0pgmLを測定用試料に用いた。2試料中のFGF-23の測定上記1の測定用試料を用いる以外は、実施例1と同様の方法により測定を行った。その結果を図2に示す。図2から明らかな様に、5~10000pgmLの濃度範囲において、FGF-23濃度依存的、かつ、直線的に発光量が増加することが判明した。従って。本発明の測定方法により、5~10000pgmLの範囲でFGF-23濃度を測定できることが判明した。人工透析とは、外的な手段で血液の老廃物除去、電解質維持、水分量維持を行うことであるが、体外で循環する血液の凝固を防ぐために抗凝固剤ヘパリンを使用している。そのため、透析患者検体では、血清分離後にフィブリンが析出することが多く見られる。血清中に析出したフィブリンが存在すると、FGF-23の測定系に影響を及ぼし正確な結果を得ることができない可能性がある。正確な測定値が得られているかどうかを判定する方法として、同時再現性試験、添加回収試験、希釈直線性試験がしばしば実施される。そこで、透析患者由来の血清ディスカバリーライフサイエンス社より購入を用いて、実施例1の測定方法について、以下の同時再現性試験、添加回収試験、希釈直線性試験を実施した。1同時再現性試験同時再現性試験とは、同一試料血清、血漿等を用いて複数回、連続測定し、測定値のばらつきを評価することで、測定法の正確性を判断する方法である。透析患者由来の3種類の血清を用いて、実施例1に記載された方法により、それぞれの血清中のFGF-23を10重測定した。測定により得られたFGF-23濃度と平均、変動係数を第1表に示した。各血清に対する変動係数は12~31と良好であった。従って、本発明の方法を用いることにより、透析患者由来の血清中のFGF-23を再現性良く測定できることが判明した。2添加回収試験添加回収試験とは、試料血清、血漿等に既知濃度の抗原FGF-23を添加したものを測定し、実際の添加量と一致するか否かを評価することで、測定法の正確さを判断する方法である。透析患者由来の3種類の血清に、WO2003057733に記載された方法によって製造したFGF-23を様々な濃度で添加したものを測定用試料として用いて、実施例1に記載された方法により測定を行い、添加回収試験を行った。添加回収率を第2表に示した。各血清に対する添加回収率は、967~1016と良好であった。従って、本発明の測定法を用いることで、透析患者由来の血清中のFGF-23を正確に測定できることが判明した。3希釈直線性試験希釈直線性試験とは、試料血清、血漿等を適当な希釈液で段階的に希釈し、希釈倍率に応じて測定値が直線的に減少していくか否かを評価することで、測定法の正確さを判断する方法である。透析患者由来の2種類の血清患者血清D,患者血清Eを、02BSABovogenBiologicals社製を含むリン酸緩衝化生理食塩水で、10段階希釈したもの、及び02BSAを含むリン酸緩衝化生理食塩水FGF-23濃度0pgmLを測定用試料に用いて、実施例1に記載された方法により測定を行い、希釈直線性試験を行った。その際の希釈率x軸と測定により決定されたFGF-23濃度y軸をプロットしたものを図3及び図4に示した。どちらの透析患者由来の血清においても良好な直線性が得られたことから、本発明の測定法を用いることで、透析患者由来の血清中のFGF-23を正確に測定できることが判明した。[比較例1]1材料及び測定方法<測定用試料>健常人より得た血清FGF-23濃度が20pgmLの血清;アリエス社より購入を、02BSABovogenBiologicals社製を含むリン酸緩衝化生理食塩水015molL塩化ナトリウムを含有する10mmolLリン酸緩衝液、pH72にてFGF-23濃度が16pgmL、14pgmL、12pgmL、10pgmL、8pgmL、6pgmL、4pgmL、2pgmLになるように希釈したもの、及び02BSAを含むリン酸緩衝化生理食塩水FGF-23濃度0pgmLを測定用試料に用いた。2試料中のFGF-23の測定測定キットとして、プレート法によるFGF-23測定試薬カイノス社製を用い、試料として、1で調製した測定用試料を用いて、実施例1と同様の方法により、5重測定した。その結果を図5に示す。FGF-23濃度が0pgmLである試料を測定した際の吸光度の平均2SDは0111図5の破線であった。FGF-23濃度が6pgmLである試料を測定した際の吸光度の平均-2SDは0104であり、0pgmL試料を測定した際の吸光度の平均2SDよりも低い値であったことから、6pgmLのFGF-23濃度は測定できないことを確認した。一方、FGF-23濃度が8pgmLである試料を測定した際の吸光度の平均-2SDは0115であり、0pgmL試料を測定した際の吸光度の平均2SDよりも高い値であったことから、8pgmLのFGF-23を測定できることを確認した。よって、この測定法において、FGF-23を検出できる最小濃度は8pgmLであると規定できる。[比較例2]FGF-23測定試薬カイノス社製;プレート法を用いて、同試薬に付属した標準溶液FGF-23濃度0pgmL、10pgmL、50pgmL、100pgmL、250pgmL、500pgmL、800pgmLを測定した時の吸光度を図6に示した。10~800pgmLまで、FGF-23濃度依存的に吸光度が増加していた。FGF-23測定試薬の測定範囲上限は800pgmLと規定されており、これより高濃度のFGF-23を定量することは出来ない。一方、本発明の方法においては、実施例2に示した通り、5~10000pgmLまで測定可能であることから、本発明の測定方法は、プレート法よりも、高感度で、測定範囲が広い方法であることが判明した。"