"MDR1遺伝子の3435位の遺伝子多型を検出するためのプローブであって、配列番号1で示される塩基配列を有するプローブ。検出可能な標識物質により標識化された、請求項1に記載のプローブ。検出可能な標識物質が蛍光色素である、請求項2に記載のプローブ。末端のシトシンが標識化された、請求項2または3に記載のプローブ。MDR1遺伝子の3435位の遺伝子多型を検出する方法であって、以下1~3の工程を全て含む方法。1被検核酸と請求項1~4のいずれかに記載のプローブとをハイブリダイズさせ複合体を形成させる工程2工程1のあとに、連続的な温度上昇を行いながら、260nmの吸光度測定または前記プローブに付加した標識のシグナル強度を測定することにより、融解曲線分析を行う工程。3工程2における、温度変化に伴うシグナル強度の変動から、前記被検核酸における変異の有無を決定する工程請求項5に記載の方法であって、以下1~3の工程を全て含む方法。1被検核酸と請求項1~4のいずれかに記載のプローブとをハイブリダイズさせ複合体を形成させる工程2工程1のあとに、連続的な温度上昇を行いながら、前記プローブを標識している蛍光色素の蛍光強度を測定することにより、融解曲線分析を行う工程。3工程2における、温度変化に伴う蛍光強度の変動から、前記被検核酸における変異の有無を決定する工程工程1における被検核酸が、プライマー対を用いて鋳型核酸から増幅された物である、請求項5または6に記載の方法。核酸増幅に、100塩基/秒以上のDNA合成速度を有し、かつ、5’エキソヌクレアーゼ活性を持たないDNAポリメラーゼを用いる、請求項7に記載の方法。前記プライマー対が、下記Fのオリゴヌクレオチドからなるフォワードプライマーおよび下記Rのオリゴヌクレオチドからなるリバースプライマーを含む一対のプライマーである、請求項7または8に記載の検出方法。F塩基配列が配列番号2で示されるオリゴヌクレオチドR塩基配列が配列番号3で示されるオリゴヌクレオチド請求項5または6に記載のMDR1遺伝子の3435位の遺伝子多型を検出する方法に用いるための遺伝子多型検出キットであって、請求項1~4のいずれかに記載のプローブを含む遺伝子多型検出キット。本発明は上記従来のMDR1遺伝子多型検査における問題点を解決しようとするものであり、その目的はMDR1遺伝子の3435位遺伝子多型検査を迅速、正確、かつ安価に行うための方法及び試薬を提供することにある。本発明者らは上記課題に鑑み鋭意検討した結果、MDR1遺伝子の3435位およびその周辺の塩基配列に特異的に結合する1本の核酸プローブを用いることにより従来技術よりも正確に3435位の遺伝子多型を検出できることを見出し、本発明を完成させるに至った。すなわち、本発明は以下のような構成からなる。[項1]MDR1遺伝子の3435位の遺伝子多型を検出するためのプローブであって、配列番号1で示される塩基配列を有するプローブ。[項2]検出可能な標識物質により標識化された、項1に記載のプローブ。[項3]検出可能な標識物質が蛍光色素である、項2に記載のプローブ。[項4]末端のシトシンが標識化された、項2または3に記載のプローブ。[項5]MDR1遺伝子の3435位の遺伝子多型を検出する方法であって、以下1~3の工程を全て含む方法。1被検核酸と項1~4のいずれかに記載のプローブとをハイブリダイズさせ複合体を形成させる工程2工程1のあとに、連続的な温度上昇を行いながら、260nmの吸光度測定または前記プローブに付加した標識のシグナル強度を測定することにより、融解曲線分析を行う工程。3工程2における、温度変化に伴うシグナル強度の変動から、前記被検核酸における変異の有無を決定する工程[項6]項5に記載の方法であって、以下1~3の工程を全て含む方法。1被検核酸と項1~4のいずれかに記載のプローブとをハイブリダイズさせ複合体を形成させる工程2工程1のあとに、連続的な温度上昇を行いながら、前記プローブを標識している蛍光色素の蛍光強度を測定することにより、融解曲線分析を行う工程。3工程2における、温度変化に伴う蛍光強度の変動から、前記被検核酸における変異の有無を決定する工程[項7]工程1における被検核酸が、プライマー対を用いて鋳型核酸から増幅された物である、項5または6に記載の方法。[項8]核酸増幅に、100塩基/秒以上のDNA合成速度を有し、かつ、5’エキソヌクレアーゼ活性を持たないDNAポリメラーゼを用いる、項7に記載の方法。[項9]前記プライマー対が、下記Fのオリゴヌクレオチドからなるフォワードプライマーおよび下記Rのオリゴヌクレオチドからなるリバースプライマーを含む一対のプライマーである、項7または8に記載の検出方法。F塩基配列が配列番号2で示されるオリゴヌクレオチドR塩基配列が配列番号3で示されるオリゴヌクレオチド[項10]項5または6に記載のMDR1遺伝子の3435位の遺伝子多型を検出する方法に用いるための遺伝子多型検出キットであって、項1~4のいずれかに記載のプローブを含む遺伝子多型検出キット。本発明によれば、薬物代謝に関与する遺伝子MDR1の3425位の多型検査を迅速、正確かつ簡便に行うことが可能になる。本発明の実施形態の一つは、MDR1遺伝子の3435位の遺伝子多型を検出するためのプローブであって、配列番号1で示される塩基配列からなるプローブである。MDR1遺伝子の3435位およびその周辺配列は配列番号4で示される。MDR1遺伝子の3435位は配列番号4で示される塩基配列の176番目の塩基に該当する。3435位はCまたはTの塩基であり、メジャーアリルはC、マイナーアリルはTであることがわかっている。配列番号4は3435位がメジャーアリルである場合の塩基配列を示している。本発明のプローブは、被検核酸に対して特異的に結合するように設計されており、融解曲線分析に適している。非特許文献3に開示されている方法は、検出に2本以上のプローブを要し本発明とは全く異なる原理で被検核酸を検出する方法であるから、該方法に用いられているプローブを本発明に直接転用することは出来ないし、参考にすることも出来ない。配列番号1で示される本発明のプローブは、MDR1遺伝子の3435位を含む部分領域に相補的な配列で構成されており、なおかつ3435位がマイナーアリルである場合に完全に相補的となる。本発明のプローブは、配列番号1に示される核酸配列が好ましいが、MDR1遺伝子の3435位を含む10塩基以上30塩基以下の核酸配列またはこれに相補的な核酸配列であれば、特に限定されない。本発明のプローブは、標識物質で標識化された標識化プローブであってもよい。好ましくは、蛍光色素によって標識された核酸プローブ、さらに好ましくは、末端が蛍光色素によって標識された核酸プローブを使用できる。本発明のプローブは、標識物質で標識化されたプローブであることが好ましい。前記標識物質は、制限されないが、蛍光色素蛍光団があげられる。前記標識化プローブの具体例として、例えば、前記蛍光色素で標識され、単独で蛍光を示し且つハイブリッド形成により蛍光が減少例えば、消光するプローブが好ましい。このような現象は、一般に、蛍光消光現象と呼ばれる。この蛍光消光現象を利用したプローブとしては、中でも、一般的にグアニン消光プローブとよばれるものが好ましい。このようなプローブは、いわゆるQProbe登録商標として知られている。グアニン消光プローブとは、例えば、オリゴヌクレオチドの3’末端もしくは5’末端の塩基がシトシンとなるように設計し、その末端の塩基シトシンが相補的な塩基グアニンに近づくと発光が弱くなる蛍光色素で前記末端を標識化したプローブである。本発明のプローブにおいては、例えば、蛍光消光現象を示す蛍光色素を、前記オリゴヌクレオチドの3’末端のシトシンに結合させてもよいし、前記オリゴヌクレオチドの5’末端をシトシンに設計し、これに結合させてもよい。前記蛍光色素は、制限されないが、例えば、フルオレセイン、リン光体、ローダミン、ポリメチン色素誘導体等があげられ、市販の蛍光色素としては、例えば、BODIPYFL商標名、モレキュラープローブ社製、FluorePrime商品名、アマシャムファルマシア社製、Fluoredite商品名、ミリポア社製、FAMABI社製、Cy3およびCy5アマシャムファルマシア社製、TAMRA等があげられる。プローブの検出条件は、特に制限されず、使用する蛍光色素により適宜決定できるが、例えば、PacificBlueは、検出波長450~480nm、TAMRAは、検出波長585~700nm、BODIPYFLは、検出波長515~555nmで検出できる。このようなプローブを使用すれば、シグナルの変動により、ハイブリダイズと解離とを容易に確認することができる。本発明のプローブは、例えば、3’末端にリン酸基が付加されてもよい。後述するように、変異の有無を検出する被検核酸標的核酸は、PCR等の核酸増幅法によって調製することができ、この際、本発明のプローブを核酸増幅反応の反応系に共存させることができる。このような場合、プローブの3’末端にリン酸基を付加させておけば、プローブ自体が核酸増幅反応によって伸長することを十分に防止できる。また、3’末端に前述のような標識物質を付加することによっても、同様の効果が得られる。本発明のプローブは、前述のように、薬物代謝に関与する遺伝子MDR1の3425位の多型検出に使用することができる。この変異の検出方法は、何ら制限されず、被検核酸と前記プローブとのハイブリダイズを利用する方法であればよい。本発明の実施形態の一つは、薬物代謝に関与する遺伝子MDR1の3425位の多型を検出する方法であって、以下1~3の工程を全て含むことを特徴とする方法である。薬物代謝に関与する遺伝子MDR1の3435位の多型を検出する方法であって、以下1~3の工程を全て含む方法。1被検核酸と項1~4のいずれかに記載のプローブとをハイブリダイズさせ複合体を形成させる工程2工程1のあとに、連続的な温度上昇を行いながら、260nmの吸光度測定または前記プローブに付加した標識のシグナル強度を測定することにより、融解曲線分析を行う工程。3工程2における、温度変化に伴うシグナル強度の変動から、前記被検核酸における変異の有無を決定する工程本発明の多型検出方法によれば、配列番号1で示される塩基配列を有するプローブを使用することで、薬物代謝に関与する遺伝子MDR1の3435位の多型を検出できる。本発明における被検核酸は、例えば、一本鎖でもよいし、二本鎖でもよい。二本鎖の場合は、例えば、被検核酸とプローブとをハイブリダイズさせてハイブリッド体を形成するために、加熱により前記二本鎖を一本鎖に解離させる工程を含むことが好ましい。前記被検核酸の種類としては、特に制限されないが、例えば、DNAや、トータルRNA、mRNA等のRNA等があげられる。また、前記被検核酸は、例えば、生体試料等の試料に含まれる核酸があげられる。前記試料中の核酸は、例えば、生体試料中に元来含まれている核酸でもよいが、例えば、変異検出の精度を向上できることから、前記生体試料中の核酸を鋳型として核酸増幅法により増幅させた増幅産物等があげられる。具体例としては、例えば、前記生体試料に元来含まれているDNAを鋳型として、核酸増幅法により増幅させた増幅産物や、前記生体試料に元来含まれているRNAから逆転写反応RT-PCRにより生成させたcDNAを鋳型として、核酸増幅法により増幅させた増幅産物があげられる。これらの増幅産物を、本発明における被検核酸としてもよい。前記増幅産物の長さは、特に制限されないが、例えば、50~1000塩基であり、好ましくは80~300塩基である。前記生体試料としては、特に制限されないが、例えば、白血球細胞等の血球試料、全血試料、口腔拭い液、咽頭拭い液等があげられる。なお、本発明において、試料の採取方法、DNAやRNA等の核酸の調製方法等は、制限されず、従来公知の方法が採用できる。本発明の方法で用いる融解曲線分析について説明する。例えば、二本鎖DNAを含む溶液を加熱していくと、260nmにおける吸光度が上昇する。これは、二本鎖DNAにおける両鎖間の水素結合が加熱によってほどけ、一本鎖DNAに解離DNAの融解することが原因である。そして、全ての二本鎖DNAが解離して一本鎖DNAになると、その吸光度は、加熱開始時の吸光度二本鎖DNAのみの吸光度の約1.5倍程度を示し、これによって融解が完了したと判断できる。本発明において、融解曲線分析を行うための温度変化に伴うシグナル変動の測定は、前述のような原理から、260nmの吸光度測定により行うこともできるが、本発明のプローブに付加した標識のシグナルを測定することが好ましい。このため、本発明のプローブとして、前述の標識化プローブを使用することが好ましい。前記標識化プローブとしては、例えば、単独でシグナルを示し且つハイブリッド形成によりシグナルを示さない標識化プローブ、または、単独でシグナルを示さず且つハイブリッド形成によりシグナルを示す標識化プローブがあげられる。前者のプローブであれば、検出対象配列とハイブリッド二本鎖を形成している際にはシグナルを示さず、加熱によりプローブが遊離するとシグナルを示す。また、後者のプローブであれば、検出対象配列とハイブリッド二本鎖を形成することによってシグナルを示し、加熱によりプローブが遊離するとシグナルが減少消失する。したがって、この標識によるシグナルをシグナル特有の条件吸光度等で検出することによって、前記260nmの吸光度測定と同様に、融解の進行を把握することができる。標識化プローブにおける標識物質は、例えば、前述のとおりである。好ましい標識物質は、蛍光色素である。標識物質に蛍光色素を用いた場合、上記方法において、前記プローブに付加した蛍光色素のシグナル強度を測定することにより、融解曲線分析を行い、この工程における、温度変化に伴うシグナル強度の変動から、前記被検核酸における変異の有無を決定することができる。前述のように、被検核酸が、鋳型核酸から核酸増幅法により増幅させた増幅産物である場合、前記工程1は、フォワードプライマーおよびリバースプライマーのプライマー対を用いて鋳型核酸から核酸を増幅する工程を含んでも良い。言い換えれば、前記工程1における被検核酸は、フォワードプライマーおよびリバースプライマーのプライマー対を用いて鋳型核酸から増幅された物であっても良い。前記プライマー対としては、MDR1遺伝子の3435位周辺領域の本発明プローブがハイブリダイズ可能な領域が特異的に増幅されるものであれば、特に制限されない。前記増幅領域は、例えば、前記プローブがハイブリダイズする領域のみでもよいし、前記ハイブリダイズ領域を含む領域であってもよい。具体的には、例えば、下記Fのオリゴヌクレオチドからなるフォワードプライマーおよび下記Rのオリゴヌクレオチドからなるリバースプライマーを含む一対のプライマーが例示できる。F塩基配列が配列番号2で示されるオリゴヌクレオチドR塩基配列が配列番号3で示されるオリゴヌクレオチド前記核酸増幅工程に用いられる具体的な核酸増幅方法としては特に限定されず、適宜公知の方法を用いることができる。例えば、PCRPolymeraseChainReaction法、NASBANucleicacidsequencebasedamplification法、TMATranscription-mediatedamplification法、SDAStrandDisplacementAmplification法等があげられるが、PCR法を用いることが好ましい。なお、これらの各方法において、増幅反応の条件は特に制限されず、従来公知の方法により行うことができる。核酸増幅にPCR法を用いる場合、DNAポリメラーゼには、α型DNAポリメラーゼを用いることが好ましい。その理由を以下に説明する。本発明プローブが含まれる反応系でMDR1遺伝子を増幅する場合、核酸増幅工程中に該核酸プローブが試料のMDR1遺伝子またはその増幅産物と結合しうる。核酸増幅工程中にMDR1遺伝子またはその増幅産物と結合した該核酸プローブは、核酸プライマーとDNAポリメラーゼによる核酸増幅反応を阻害する。TaqDNAPolymeraseなどPolI型のDNAポリメラーゼは5’→3’エキソヌクレアーゼ活性を持つことが知られている。この活性のため、核酸増幅反応中に鋳型となるMDR1遺伝子と結合した核酸がある場合、該結合核酸はエキソヌクレアーゼ活性によって分解されてしまう。このため、反応系中の該核酸プローブが減少し核酸検出工程に問題が生じる可能性がある。従って、PolI型DNAポリメラーゼを用いて本発明を実施することは好ましくない。他方、KODDNAPolymerase超好熱始原菌ThermococcuskodakaraensisKOD1由来などα型のDNAポリメラーゼは5’→3’エキソヌクレアーゼ活性は持たず、3’→5’エキソヌクレアーゼ活性を持つ。従って、α型DNAポリメラーゼを用いれば上記問題を解決できるのみならず、3’→5’エキソヌクレアーゼ活性により核酸増幅工程において高い正確性が発揮される。通常、α型DNAポリメラーゼは3’→5’エキソヌクレアーゼ活性のため、核酸増幅速度はPolI型酵素と比較して低い傾向がある。しかし、KODDNAPolymeraseはα型DNAポリメラーゼでありながらDNA合成活性が高く100塩基/秒以上のDNA合成速度を有し伸長効率が優れている。従って、本発明の実施にはα型DNAポリメラーゼの中でも、KODDNAPolymerase東洋紡績製、商標を用いることが好ましい。さらに、α型DNAポリメラーゼを変異させて100塩基/秒以上のデオキシリボ核酸合成速度を達成させた変異型、あるいは、野生型および/または変異型の組み合わせにより当該性能を達成させたDNAポリメラーゼ組成物も、本発明の実施に適したDNAポリメラーゼとして用いることができる。例えば、上記KODDNAPolymerase以外に100塩基/秒以上のデオキシリボ核酸合成速度を有するDNAポリメラーゼとして、KODFX東洋紡績製、登録商標、KOD-Plus-東洋紡績製、商標、KODDash東洋紡績製、登録商標、PrimeSTARHSDNAポリメラーゼタカラバイオ製、登録商標なども利用できる。本発明において、DNA合成活性とは鋳型DNAにアニールされたオリゴヌクレオチドまたはポリヌクレオチドの3’-ヒドロキシル基にデオキシリボヌクレオシド5’-トリホスフェートのα-ホスフェートを共有結合せしめることにより、デオキシリボ核酸にデオキシリボヌクレオシド5’-モノホスフェートを鋳型依存的に導入する反応を触媒する活性をいう。その活性測定法は、酵素活性が高い場合には、保存緩衝液でサンプルを希釈して測定を行う。本発明では、下記A液25μL、B液およびC液各5μLおよび滅菌水10μLをエッペンドルフチューブに加えて攪拌混合した後、上記酵素液5μLを加えて75°Cで10分間反応する。その後、氷冷し、E液50μL、D液100μLを加えて、攪拌後、さらに10分間氷冷する。この液をガラスフィルターワットマンGF/Cフィルターで濾過し、D液及びエタノールで充分洗浄し、フィルターの放射活性を液体シンチレーションカウンターパッカード社製で計測し、鋳型DNAへのヌクレオチドの取り込みを測定する。酵素活性の1単位はこの条件下で30分あたり10nモルのヌクレオチドを酸不溶性画分に取り込む酵素量とする。A:40mMTris-HClpH7.516mM塩化マグネシウム15mMジチオスレイトール100μg/mLBSAB:2μg/μL活性化仔牛胸腺DNAC:1.5mMdNTP250cpm/pmol3HdTTPD:20トリクロロ酢酸2mMピロリン酸ナトリウムE:1μg/μLキャリアーDNA本発明において、3’-5’エキソヌクレアーゼ活性とは、DNAの3’末端領域を切除し、5’-モノヌクレオチドを遊離する活性をいう。その活性測定法は、50μLの反応液120mMTris-HClpH8.8at25°C,10mMKCl,6mM硫酸アンモニウム,1mMMgCl2,0.1TritonX-100,0.001BSA,5μgトリチウムラベルされた大腸菌DNAを1.5mLのエッペンチューブに分注し、DNAポリメラーゼを加える。75°Cで10分間反応させた後、氷冷によって反応を停止し、次にキャリアーとして、0.1のBSAを50μL加え、さらに10のトリクロロ酢酸、2ピロリン酸ナトリウム溶液を100μL加え混合する。氷上で15分放置した後、12,000回転で10分間遠心し沈殿を分離する。上清100μLの放射活性を液体シンチレーションカウンターパッカード社製で計測し、酸可溶性画分に遊離したヌクレオチド量を測定する。本発明において、DNAポリメラーゼのDNA合成速度とは単位時間当たりのDNAの合成数をいう。DNA合成速度は、市販品であれば該市販品の説明書等に記載されている値、説明書等に記載がない場合は文献等に記載されている値を指すものとする。これらの方法で特定できない場合は、以下の方法で求めることができる。DNA合成速度の測定法DNAポリメラーゼの反応液20mMTris-HClpH7.5,8mM塩化マグネシウム、7.5mMジチオスレイトール、100μg/mLBSA、0.1mMdNTP、0.2μCi[α-32P]dCTPを、プライマーをアニーリングさせたM13mp181本鎖DNAと75°Cで反応させる。反応停止は等量の反応停止液50mM水酸化ナトリウム、10mMEDTA、5フィコール、0.05ブロモフェノールブルーを加えることにより行う。上記反応にて合成されたDNAをアルカリアガロースゲル電気泳動にて分画した後、ゲルを乾燥させオートラジオグラフィーを行う。DNAサイズマーカーとしてはラベルしたλ/HindIIIを用いる。このマーカーのバンドを指標として合成されたDNAのサイズを測定することによって、DNA合成速度を求める。次に、本発明の変異検出方法について、本発明のプローブとして、蛍光色素で標識化された標識化プローブを使用する例をあげて説明する。なお、本発明の変異検出方法は、以下の説明によって何ら制限されることはない。まず、例えば全血からゲノムDNAを単離する。単離は、例えば、市販のゲノムDNA単離キットを用いて行うことができる。次に、単離したゲノムDNAを含む試料に、標識化プローブとして、例えば、QProbeを添加する。前記プローブの添加のタイミングは、特に制限されず、例えば、後述する増幅反応前、増幅反応途中および増幅反応後のいずれに、増幅反応の反応系に添加してもよい。中でも、増幅反応と、前記工程2とを連続的に行うことができるため、増幅反応前に添加することが好ましい。このように核酸増幅反応の前に前記プローブを添加する場合は、例えば、前述のように、その3’末端に、蛍光色素を付加したり、リン酸基を付加することが好ましい。前記プローブは、単離したゲノムDNAを含む液体試料に添加してもよいし、溶媒中でゲノムDNAと混合してもよい。前記溶媒としては、特に制限されず、例えば、Tris-HCl等の緩衝液、KCl、MgCl2、MgSO4、グリセロール等を含む溶媒、PCR反応液等、従来公知のものがあげられる。続いて、単離したゲノムDNAを鋳型として、PCR等の核酸増幅法によって、検出目的の塩基部位を含む配列を増幅させる。なお、PCR等の条件は、特に制限されず、従来公知の方法により行うことができる。PCRのプライマーの配列は、検出目的の塩基部位を含む配列を増幅できるものであれば特に制限されず、前述のように、目的の配列に応じて、従来公知の方法により適宜設計できる。プライマーの長さは、特に制限されず、一般的な長さ例えば、10~40merに設定できる。本発明の検出方法に使用するプライマーセットとしては、例えば、前述の本発明のプライマーセットがあげられる。なお、本発明のプライマーセットの用途は、本発明の検出方法には制限されず、また、本発明の検出方法に使用するプライマーセットも、本発明のプライマーセットには限定されない。次に、得られたPCR増幅産物の解離、および、解離により得られた一本鎖DNAと前記標識化プローブとのハイブリダイズを行う。これは、例えば、前記反応液の温度変化によって行うことができる。前記解離工程における加熱温度は、前記増幅産物が解離できる温度であれば特に制限されないが、例えば、85~98°Cである。加熱時間も特に制限されないが、通常、1秒~10分であり、好ましくは1秒~5分である。また、解離した一本鎖DNAと前記標識化プローブとのハイブリダイズは、例えば、前記解離工程の後、前記解離工程における加熱温度を降下させることによって行うことができる。温度条件としては、例えば、35~50°Cである。ハイブリダイズ工程の反応系反応系における各組成の体積や濃度は、特に制限されない。具体例としては、前記反応系において、DNAの濃度は、例えば、0.01~1μmol/Lであり、好ましくは0.1~0.5μmol/L、前記標識化プローブの濃度は、例えば、前記DNAに対する添加割合を満たす範囲が好ましく、例えば、0.001~10μmol/Lであり、好ましくは0.001~1μmol/Lである。そして、前記反応液の温度を変化させ、前記増幅産物と前記標識化プローブとのハイブリッド形成体の融解状態を示すシグナル値を測定する。具体的には、例えば、前記反応液前記一本鎖DNAと前記標識化プローブとのハイブリッド形成体を加熱し、温度上昇に伴うシグナル値の変動を測定する。前述のように、末端のC塩基が標識化されたプローブグアニン消光プローブを使用した場合、一本鎖DNAとハイブリダイズした状態では、蛍光が減少または消光し、解離した状態では、蛍光を発する。したがって、例えば、蛍光が減少または消光しているハイブリッド形成体を徐々に加熱し、温度上昇に伴う蛍光強度の増加を測定すればよい。蛍光強度の変動を測定する際の温度範囲は、特に制限されないが、例えば、開始温度が室温~85°Cであり、好ましくは25~70°Cであり、終了温度は、例えば、40~105°Cである。また、温度の上昇速度は、特に制限されないが、例えば、0.05~20°C/秒であり、好ましくは0.08~5°C/秒である。目的の塩基部位における遺伝子型野生型、変異型などの決定は、例えば、ハイブリッド形成時におけるシグナル変動を測定することによって行いうる。すなわち、前記プローブを含む反応液の温度を降下させてハイブリッド形成体を形成する際に、前記温度降下に伴うシグナル変動を測定する。具体例として、単独でシグナルを示し且つハイブリッド形成によりシグナルを示さない標識化プローブ例えば、グアニン消光プローブを使用した場合、一本鎖DNAとプローブとが解離している状態では蛍光を発しているが、温度の降下によりハイブリッドを形成すると、前記蛍光が減少または消光する。したがって、例えば、前記反応液の温度を徐々に降下させて、温度下降に伴う蛍光強度の減少を測定すればよい。他方、単独でシグナルを示さず且つハイブリッド形成によりシグナルを示す標識化プローブを使用した場合、一本鎖DNAとプローブとが解離している状態では蛍光を発していないが、温度の降下によりハイブリッドを形成すると、蛍光を発するようになる。したがって、例えば、前記反応液の温度を徐々に降下させて、温度下降に伴う蛍光強度の増加を測定すればよい。また、本発明においては、目的の塩基部位における遺伝子型の決定のために、前記シグナルの変動を解析してTmmeltingtemperature値として決定してもよい。以下に実施例を示して本発明を具体的に説明するが、本発明は実施例に限定されるものではない。実施例1:精製したヒトゲノムからのMDR1遺伝子の3435位の検出1試料の調製既にMDR1遺伝子の3435位がメジャーホモC/Cであることが判明している精製されたヒトゲノム以下HM、MDR1遺伝子の3435位がヘテロC/Tであることが判明している精製されたヒトゲノム以下HH、そしてMDR1遺伝子の3435位がマイナーホモT/Tであることが判明している精製されたヒトゲノム以下Hmを試料とし、陰性コントロールNCとして10mMのTris-HClを試料とした。2核酸増幅および融解曲線分析上記ヒトゲノム試料および陰性コントロールにそれぞれ下記試薬を添加して、下記条件によりMDR1遺伝子の3435位を検出した。核酸増幅および融解曲線分析には東洋紡績社製GENECUBE登録商標を使用した。試薬以下の試薬を含む13.2μl溶液を調製した。核酸プライマー配列番号21500nM核酸プライマー配列番号3250nM核酸プローブ配列番号1、3’末端をBODIPY-FL標識400nM×10緩衝液1.3μldNTP0.2mMMgSO44mMBSA1.3μgDMSO0.98μLKODplusDNApolymerase東洋紡績製0.4U試料4μl核酸増幅および融解曲線分析94°C2分以上1サイクル97°C1秒60°C3秒63°C5秒以上50サイクル94°C30秒39°C30秒39°C~75°C0.09°C/秒で温度上昇結果図1は、融解曲線における温度上昇にともなう蛍光強度の変化を、グラフの横軸を温度、縦軸を蛍光シグナルの微分値として解析した結果を表した図である。HMは55°C付近にピークが現れており、Hmは62~63°Cにピークが現れている。そしてHHはその両方の温度でピークが現れている。本実施例で用いた配列番号1のプローブは末端がBODIPY-FL標識されている。このプローブは相補的な配列の核酸と結合している間は蛍光が消光しており、逆にプローブが単独で遊離している間は蛍光が発光しているという特徴を有する。配列番号1のプローブはマイナーホモのMDR1遺伝子3435位を含む核酸と最も強く結合し、メジャーホモのMDR1遺伝子3435位を含む核酸とは一塩基のミスマッチが生じているため、より弱く結合する。従って、図1の55°C付近でのピークは被検核酸中のMDR1遺伝子の3435位がメジャーアリルC/Cであることを示しており、62~63°Cのピークは被検核酸中のMDR1遺伝子の3435位がマイナーアリルであることを示している。そしてその両方のピークを発した被検核酸はメジャーアリルとマイナーアリルの両方を有するヘテロであることを示している。以上より、本発明プローブを用いることでMDR1遺伝子の3435位多型を容易に識別できることが示された。実施例2:全血希釈液からのMDR1遺伝子の3435位の検出1試料の調製全血10μlに10mMTris-HClpH7.5を90μl加えて、希釈倍率10倍の全血希釈液を調製した。この全血希釈液を試料とした。検出系は10μlであり、試料は1μlを供するため、検出系での全血の終濃度は1となる。2核酸増幅および融解曲線分析上記全血希釈液に下記試薬を添加して、下記条件によりMDR1遺伝子の3435位を検出した。核酸増幅および融解曲線分析には東洋紡績社製GENECUBE登録商標を使用した。試薬以下の試薬を含む10μl溶液を調製した。核酸プライマー配列番号21500nM核酸プライマー配列番号3250nM核酸プローブ配列番号1、3’末端をBODIPY-FL標識400nM×10緩衝液1μldNTP0.2mMMgSO44mMBSA1μgDMSO0.75μLKODplusDNApolymerase東洋紡績製0.3U試料1μl核酸増幅および融解曲線分析実施例1と同じ。結果図2は、融解曲線における温度上昇にともなう蛍光強度の変化を、グラフの横軸を温度、縦軸を蛍光シグナルの微分値として解析した結果を表した図である。図2から明らかなように、本発明プローブを用いることによって全血の希釈液からでもMDR1遺伝子の3435位の多型を検出することができる。比較例1:既存発明プローブとの検出能比較1試料の調製2核酸増幅および融解曲線分析いずれも実施例1と同じである。試薬1以下の試薬を含む13.2μl溶液を調製し、試薬1とした。核酸プライマー配列番号21500nM核酸プライマー配列番号3250nM核酸プローブ配列番号1、3’末端をBODIPY-FL標識400nM×10緩衝液1.3μldNTP0.2mMMgSO44mMBSA1.3μgDMSO0.98μLKODplusDNApolymerase東洋紡績製0.4U試料4μl試薬2以下の試薬を含む13.2μl溶液を調製し、試薬2とした。なお、本比較例で用いた配列番号5で示される核酸プローブは特許文献2の配列番号5で示される核酸プローブであり、該核酸プローブの3’末端はBODIPY-FLで標識されている。核酸プライマー配列番号21500nM核酸プライマー配列番号3250nM核酸プローブ配列番号5、3’末端をBODIPY-FL標識400nM×10緩衝液1.3μldNTP0.2mMMgSO44mMBSA1.3μgDMSO0.98μLKODplusDNApolymerase東洋紡績製0.4U試料4μl結果図3は、融解曲線における温度上昇にともなう蛍光強度の変化を、グラフの横軸を温度、縦軸を蛍光シグナルの微分値として解析した結果を表した図である。実線は本発明プローブである配列番号1で示される核酸プローブによる検出結果を、破線は配列番号5で示される核酸プローブによる検出結果を示している。実線と破線とを比較した結果、以下の二点で本発明プローブの方が優れていると言える。まず第一点は、本発明プローブの方が蛍光微分値が高いことである。上述したとおり、末端がBODIPY-FLで標識されたプローブは被検核酸と結合すると消光し、解離すると発光するという性質を示す。従って、蛍光微分値すなわち蛍光変化が大きいということは被検核酸への結合の有無を判別しやすいということを示している。以上から、本発明プローブと配列番号5で示される既存発明プローブとを比較したとき、本発明プローブの方が被検核酸の検出結果が明瞭に現れることを示唆している。第二点は、本発明プローブの方がヘテロタイプを識別しやすいことである。図3のHHを示す実線と破線を比較すると、実線の方が二つのピークの高さがより均等に近い形状である。ヘテロタイプを検出する場合に二つのピークの高さ、すなわち蛍光微分値が離れていたり、あるいはピークの変曲点付近が緩やかであったりすると、特に機械による自動検出を行っている場合に、その波形がヘテロを示すものであると認識され難くなる。このような性質を示す核酸プローブを用いて検出を行うことは、多型の誤診断を誘発する可能性があるため、本発明のように融解曲線分析を利用して遺伝子多型の診断を行う場合は、用いられる核酸プローブはヘテロタイプであることを示す二つのピークの蛍光微分値がなるべく近くなる性質を持った核酸プローブであることが好ましい。以上の理由から、本発明プローブの方が既存発明プローブよりも誤診断の可能性が少ないことは明らかである。以上二点の理由から、既存発明プローブよりも本発明プローブの方がMDR1の3435位多型検査に好ましい核酸プローブであると言える。"