血液培養ボトル中の微生物または微生物由来の核酸を検出する方法であって以下の1~3の工程を含む方法。1血液培養ボトルの液層の一部または全部を試料として採取する工程21で採取した試料を、続く3の工程での終濃度が、血液培養液に対して希釈倍率2倍を越え100倍以下となるように水またはトリス緩衝液で希釈する工程32の試料を遺伝子検査に供して、試料に含まれる微生物由来の核酸を検出する工程血液培養ボトル中の微生物または微生物由来の核酸を検出する方法であって以下の1~3の工程を含む方法。1血液培養ボトルの液層の一部または全部を試料として採取する工程21で採取した試料を水またはトリス緩衝液で希釈し、次いで、得られた希釈試料にカオトロピック塩を含む溶液を添加し、カオトロピック塩を含む溶液を添加した試料からシリカを含むカラムによって核酸を精製する工程であって、続く3の工程での終濃度が、血液培養液に対して希釈倍率2倍を越え100倍以下となるようにする工程32の試料を遺伝子検査に供して、試料に含まれる微生物由来の核酸を検出する工程本発明は、上記の遺伝子検査に関する問題点を解決しようとするものである。本発明者らは上記課題に鑑み鋭意検討した結果、血液培養液の濃度をある一定の範囲にすることにより、従来技術よりも迅速かつ正確にMRSAを検出できることを見出し、本発明を完成させるに至った。すなわち、本発明は以下のような構成からなる。[項1]血液培養ボトル中の微生物または微生物由来の核酸を検出する方法であって以下の1~3の工程を含む方法。1血液培養ボトルの液層の一部または全部を試料として採取する工程21で採取した試料を、続く3の工程での終濃度が、血液培養液に対して希釈倍率2倍を越え100倍以下となるように水またはトリス緩衝液で希釈する工程32の試料を遺伝子検査に供して、試料に含まれる微生物由来の核酸を検出する工程[項2]血液培養ボトル中の微生物または微生物由来の核酸を検出する方法であって以下の1~3の工程を含む方法。1血液培養ボトルの液層の一部または全部を試料として採取する工程21で採取した試料を水またはトリス緩衝液で希釈し、次いで、得られた希釈試料にカオトロピック塩を含む溶液を添加し、カオトロピック塩を含む溶液を添加した試料からシリカを含むカラムによって核酸を精製する工程であって、続く3の工程での終濃度が、血液培養液に対して希釈倍率2倍を越え100倍以下となるようにする工程32の試料を遺伝子検査に供して、試料に含まれる微生物由来の核酸を検出する工程本発明によれば、血液培養によって増殖させた微生物の検出を迅速かつ簡便に行うことが可能になる。本発明の実施形態の一局面は、血液培養ボトル中の微生物または微生物由来の核酸を検出する方法であって、以下の1~3の工程を含む方法である。1血液培養ボトルの液層の一部または全部を試料として採取する工程21で採取した試料を、続く3の工程での終濃度が、血液培養液に対して希釈倍率2倍を越え100倍以下となるように水またはトリス緩衝液で希釈する工程32の試料を遺伝子検査に供して、試料に含まれる微生物由来の核酸を検出する工程通常、試料の希釈は、検出対象である微生物菌体の濃度を低下させるため、検査にはふさわしくないと考えられてきた。しかし意外なことに、発明者らの検討によれば、血液培養液をそのまま核酸増幅に供しても遺伝子が検出できないのに対し、核酸増幅系における血液培養液の終濃度が5未満になるよう希釈を行えば、微生物の溶菌操作等を行うことなく簡易な操作で核酸増幅および検出が可能であることが明らかになった。本発明における遺伝子検査とは、核酸を検出する方法および/または核酸から微生物を同定する方法である。検査法としては従来公知の各方法を用いることができ特に限定されないが、好ましくは1核酸増幅反応により核酸を増幅する工程2該増幅産物を検出する工程、の二つの工程を含む方法である。核酸の増幅工程に用いられる具体的な核酸増幅方法は特に限定されず、適宜公知の方法を用いることができる。例えば、PCRPolymeraseChainReaction法、NASBANucleicacidsequencebasedamplification法、TMATranscription-mediatedamplification法、SDAStrandDisplacementAmplification法等があげられるが、PCR法を用いることが好ましい。なお、これらの各方法において、増幅反応の条件は特に制限されず、従来公知の方法により行うことができる。核酸増幅産物の検出工程に用いられる具体的な核酸検出方法としては特に限定されず、適宜公知の方法を用いることができる。例えば、アガロースゲル電気泳動法、シークエンス法、DNAプローブ法、リアルタイムPCR法等があげられるが、DNAプローブ法を用いることが好ましい。上記検出工程の前に、希釈して得られた試料にカオトロピック塩を含む溶液を添加し、カオトロピック塩を含む溶液を添加した試料からシリカを含むカラムによって核酸を精製する工程を含んでも良い。この工程に用いる溶液やカラムは特に限定されない。カオトロピック塩としてはグアニジンイソチオシアネート、グアニジン塩酸塩等が例示され、好ましくは2~4mol/Lのグアニジン塩酸塩である。また、カラムとしては、シリカモノリスが例示され、市販のものを用いることができる。本発明の方法の検出対象となる微生物、または、本発明の方法の検出対象である核酸の由来となる微生物は、血液培養ボトルによって培養可能な微生物であれば特に限定されない。本発明の方法において、血液培養方法は特に限定されない。例えば市販の血液培養ボトルを用いて定法により培養すればよい。血液培養に用いる培地も特に限定されず、市販の血液培養ボトルを用いることができる。本発明において、血液培養液の希釈に用いる溶液は、遺伝子検査を著しく阻害するものでなければ特に限定されない。希釈に用いる溶液としては、水、トリス緩衝液が挙げられる。本発明において、遺伝子検査を行うために適切な血液培養液の希釈倍率は、血液培養液に対して2倍を越え100倍以下である。これは、検出液中の終濃度で0.1以上5未満に相当する。検出系中の血液培養液の終濃度が4以下である希釈倍率25倍を超えることがより好ましく、3.4以下である希釈倍率30倍を超えることがより好ましく、3以下である希釈倍率33.3倍を超えることがより好ましい。終濃度の下限については特に限定されないが、一般的に検出系中の試料濃度が小さくなるほど検出されなくなる可能性が高まる測定系の検出限界にもよるがため、十分な検出能を確保するという観点から0.1以上であることが好ましい。試料を希釈する工程には、得られた希釈試料にカオトロピック塩を含む溶液を添加し、カオトロピック塩を含む溶液を添加した試料からシリカを含むカラムによって核酸を精製する工程を含んでも良い。この場合、希釈倍率は、全体の工程を通して、続く核酸検出工程での終濃度が、血液培養液に対して希釈倍率2倍を越え100倍以下となるようにすればよい。なお、シリカを含むカラムによって核酸を精製する工程における希釈倍率は、カラムに供した血液培養液の液量と、カラムから溶出させた溶出液の液量との比率で決定する。以下に実施例を示して本発明を具体的に説明するが、本発明は実施例に限定されるものではない。実施例1:血液培養ボトルで培養したコアグラーゼ陰性ブドウ球菌の直接検出1試料の調製メチシリン耐性コアグラーゼ陰性ブドウ球菌を含む血液培養液を10mMのTris-HClpH7.5で検出系10μLでの終濃度が1/10、1/20、1/50、1/100、1/200、1/300、1/400、1/500、1/1000の濃度になるようそれぞれ希釈し、試料とした。陰性コントロールNCとして水を使用した。以下に血液培養液の検出系中の試料終濃度と試料希釈倍率との関係を表1に示す。2核酸増幅および融解曲線解析上記試料および陰性コントロールにそれぞれ下記試薬を添加して、PCR法および蛍光プローブ法を利用してメチシリン耐性遺伝子を検出した。核酸増幅および融解曲線は下記条件で実施した。核酸増幅および融解曲線解析には東洋紡績社製GENECUBE登録商標を使用した。試薬以下の試薬を含む10μL溶液を調製した。核酸プライマー配列番号1300nM核酸プライマー配列番号21500nM核酸プローブ配列番号3、3’末端をBODIPY-FL標識300nM×10緩衝液1μLdNTP0.2mMMgSO44mMBSA1μgDMSO0.75μLKODplusDNApolymerase東洋紡績製0.3U試料1μL核酸増幅および融解曲線解析94°C2分以上1サイクル97°C1秒60°C3秒63°C5秒以上50サイクル94°C30秒39°C30秒39°C~75°C0.09°C/秒で温度上昇結果図1は、温度上昇にともなう蛍光強度の変化を、グラフの横軸を温度、縦軸を蛍光シグナルの微分値として解析結果を表した図である。血液培養液を終濃度1/10または1/20となるように希釈した試料からはメチシリン耐性遺伝子を検出することができなかった。これに対して、終濃度を1/50以下となるように希釈した試料からはメチシリン耐性遺伝子が検出された。以上の結果から、検出系に血液培養液成分が少なくとも5以上含まれる場合は、血液培養液中の菌に対する遺伝子検査が阻害されることが示された。さらに、本実施例により検出系に含まれる血液培養液成分が2以下であれば遺伝子検査が実施可能であることが明らかになった。実施例2:血液培養ボトルで培養したコアグラーゼ陰性ブドウ球菌のシリカモノリスによる核酸精製からの検出1試料の調製メチシリン耐性コアグラーゼ陰性ブドウ球菌を含む血液培養液を溶液量300μL中の終濃度が1、1/10、1/40となるように精製水で希釈した。これをモノリス構造のシリカ固層カラムを含むチップ以下モノリスチップ、GLサイエンス製を用いて核酸精製を行い、精製した核酸を含む溶液を試料とした。陰性コントロールNCとして水を使用した。以下に血液培養液から精製した核酸を含む溶液試料の検出系中の試料終濃度と試料希釈倍率との関係を表2に示す。なお、検出系での終濃度とは血液培養液からの精製物が核酸増幅系に占める割合によって示される。2核酸精製核酸精製は以下の手順で行った。血液培養液を精製水で希釈した以降の工程は全てGENECUBE東洋紡を使用して行った。メチシリン耐性コアグラーゼ陰性ブドウ球菌を含む血液培養液を1に記載の終濃度となるように精製水で希釈した。各希釈液量は300μLとなるように調製した。この希釈液300μLにGENECUBE用溶解吸着液東洋紡550μLを添加し、65°Cで5分間加熱した。加熱後の溶液をモノリスチップに通した。次に、GENECUBE用洗浄液東洋紡350μLをモノリスチップに通し、モノリスチップを洗浄した。この洗浄工程は2回行った。洗浄後、10mM水酸化カリウム20μLでモノリスチップに吸着していた核酸を溶出し回収した。この回収した溶液を遺伝子検査試料とした。3核酸増幅および融解曲線解析上記試料および陰性コントロールにそれぞれ下記試薬を添加して、PCR法および蛍光プローブ法を利用してメチシリン耐性遺伝子を検出した。核酸増幅および融解曲線は下記条件で実施した。核酸増幅および融解曲線解析には東洋紡績社製GENECUBE登録商標を使用した。核酸増幅および融解曲線解析試薬以下の試薬を含む13.2μL溶液を調製した。核酸プライマー配列番号1300nM核酸プライマー配列番号21500nM核酸プローブ配列番号3、3’末端をBODIPY-FL標識300nM×10緩衝液1.3μLdNTP0.2mMMgSO44mMBSA1.3μgDMSO0.98μLKODplusDNApolymerase東洋紡績製0.4U試料4μL核酸増幅および融解曲線解析94°C2分以上1サイクル97°C1秒60°C3秒63°C5秒以上50サイクル94°C30秒39°C30秒39°C~75°C0.09°C/秒で温度上昇結果本実施例の結果を表3に示す。血液培養液を希釈せずに核酸精製を行った後、精製された核酸を含む溶液を試料として遺伝子検査を行ったところ、該試料からメチシリン耐性遺伝子は検出されなかった表では結果を×で表示、NCはネガティブコントロール。これに対して、血液培養液の割合が1/10または1/40となるように精製水で希釈し、該希釈液から核酸を精製し、精製された核酸を含む溶液を試料として遺伝子検査を行うと、該試料からメチシリン耐性遺伝子が検出された表では結果を○で表示。この結果は二つのことを示唆している。すなわち、第一にはシリカ固層カラムによる核酸精製では、血液培養液に含まれる遺伝子検査の阻害要因を完全には除去できないことである。第二には、シリカ固層カラムで血液培養液からの核酸精製を行う場合でも、血液培養液を予め希釈することが遺伝子検査を正確に実施する上で非常に有効な手段となることである。比較例1:リン酸緩衝液pH7.5で希釈した血液培養液からのコアグラーゼ陰性ブドウ球菌の直接検出1試料の調製メチシリン耐性コアグラーゼ陰性ブドウ球菌を含む血液培養液を10mMのリン酸カリウム‐ナトリウム緩衝液pH7.5で検出系10μLでの終濃度が1/10、1/50、1/100、1/200、1/500、1/1000の濃度になるようそれぞれ希釈し、試料とした。陰性コントロールNCとして水を使用した。2核酸増幅および融解曲線解析上記試料および陰性コントロールにそれぞれ下記試薬を添加して、PCR法および蛍光プローブ法を利用してメチシリン耐性遺伝子を検出した。核酸増幅および融解曲線は下記条件で実施した。核酸増幅および融解曲線解析には東洋紡績社製GENECUBE登録商標を使用した。試薬以下の試薬を含む10μL溶液を調製した。核酸プライマー配列番号1300nM核酸プライマー配列番号21500nM核酸プローブ配列番号3、3’末端をBODIPY-FL標識300nM×10緩衝液1μLdNTP0.2mMMgSO44mMBSA1μgDMSO0.75μLKODplusDNApolymerase東洋紡績製0.3U試料1μL核酸増幅および融解曲線解析94°C2分以上1サイクル97°C1秒60°C3秒63°C5秒以上50サイクル94°C30秒39°C30秒39°C~75°C0.09°C/秒で温度上昇結果図2は、温度上昇にともなう蛍光強度の変化を、グラフの横軸を温度、縦軸を蛍光シグナルの微分値として解析結果を表した図である。本比較例では終濃度を1/200となるように希釈した試料のみメチシリン耐性遺伝子が検出された。実施例1の結果と比較すると、血液培養液中のコアグラーゼ陰性ブドウ球菌由来メチシリン耐性遺伝子を検出することができる血液培養液終濃度の範囲が著しく狭まっていることが明らかである。これはリン酸緩衝液によって核酸増幅が阻害されていることを示唆している。本比較例の結果は、血液培養液の希釈に使用する溶液としては、リン酸緩衝液は不適当であり、トリス緩衝液の方がより好ましいことを示している。