腸の障壁の完全性を刺激するための方法において使用する組成物を製造するための、多価不飽和脂肪酸の使用であって、前記方法は、哺乳類にたいして、下記aおよびbを含有する組成物を投与することを含んでなる使用:aエイコサペンタエン酸、ドコサヘキサエン酸およびアラキドン酸;ここでの20および22炭素原子を有する長鎖多価不飽和脂肪酸の含量は、全脂肪含量の15重量を上回らない;およびb少なくとも二つの異なるオリゴ糖;該二つのことなるオリゴ糖は、単糖単位で90未満の相同性を有する。栄養性の組成物であって:aEPA、DHAおよびARAを、20および22炭素原子を有する長鎖多価不飽和脂肪酸の含量が、全脂肪含量の15重量を上回らないように含み;且つb単糖単位で90未満の相同性を有する、少なくとも二つの異なるオリゴ糖を含む組成物。ガラクトオリゴ糖ならびに、フルクトオリゴ糖、イヌリンおよびその混合物から成る群から選択されるフルクタンを含む、請求項2に記載の組成物。請求項2または請求項3に記載の組成物であって、少なくとも10重量のオリゴ糖が、2から5の重合度を有し、少なくとも5重量が10から60の間のDPを有する組成物。請求項2から請求項4の何れか1項に記載の組成物であって、さらに、酸性オリゴ糖、好ましくはDPが2から60の間のウロン酸ポリマーを含む組成物。請求項2から請求項5の何れか1項に記載の組成物であって、75から125エネルギーのタンパク質;40から55エネルギーの炭水化物;および35から50エネルギーの脂肪を含み、前記タンパク質が、加水分解された乳タンパク質、植物性タンパク質およびまたはアミノ酸から成る群から選択されたメンバーを含む組成物。請求項2から請求項6の何れか1項に記載の組成物であって、該組成物が、06から08kcalmlのカロリー含量;50から500mOsmkgの重量モル浸透圧濃度;および50mPas未満の粘性を有する組成物。請求項2から請求項7のいずれか1項に記載の組成物であって、乳児に摂食させるのに適しており:a長鎖多価不飽和脂肪酸の含量が、全脂肪含量の3重量未満であり;bオメガ3長鎖多価不飽和脂肪酸が、全脂肪含量の1重量未満であり;cオメガ6長鎖多価不飽和脂肪酸が、全脂肪含量の2重量未満であり;dARA含量が、全脂肪含量の1重量未満であり;およびeEPADHAの割合が1以下である、組成物。医薬品としての使用するための、請求項2から請求項8の何れか1項に記載の組成物。アレルギーの治療または予防の方法において使用する薬物を製造するための、請求項2から請求項8の何れか1項に記載の組成物の使用であって、該方法が請求項2から請求項8の何れか1項に記載の組成物を哺乳類に投与することを含む使用。下痢の治療または予防の方法において使用する薬物を製造するための、請求項2から請求項8の何れか1項に記載の組成物の使用であって、該方法が請求項2から請求項8の何れか1項に記載の組成物を哺乳類に投与することを含む使用。実施例1:障壁の完全性におけるLCPUFAの効果腸管上皮細胞株T84、米国、マナッサスの単層を、トランスウェルフィルターにて培養し、粘膜性および漿膜性の両サンプリングおよびヒト腸管上皮細胞の刺激を行えるようにした。集密状態となった後二週間、単層を、内腔の画分にて、多価不飽和脂肪酸ARA、DHA、EPAまたはコントロールであるパルミチン酸とともに、培養した。後半の手順は、食事性化合物のinvivoの投与経路を模倣するために選択された。細胞を、ARA、DHA、EPA、またはパルミチン酸で、0、24、48および72時間、異なる濃度で10μMおよび100μM培養した。実験は、基底障壁の完全性を評価するために行った。上皮性障壁の機能は、経上皮抵抗性および4kDFITCデキストランの透過性を測定することによって決定した。該経上皮抵抗性は、上皮のボルト-オームメーターにて測定した。4kDFITCデキストランの上皮の透過性は以下のように決定した。デキストランのフラックスに先駆けて、培地を、1時間かけてフェノールの入っていない培養培地と交換し、続いて5μlの4kDaFITCデキストランを内腔画分に添加した。30分の培養の後、100μlのサンプルを漿膜性画分から回収し、蛍光シグナルを、励起波長を485nmおよび放出波長を520nmで測定したBMGLabtechnologies米国。FITCデキストランのフラックスは、pmolFITCデキストランcm2hで算出した。統計分析は、ANOVAを用いて行った。72時間培養の後の、自発的な障壁の完全性における、脂肪酸の効果の結果を、表1に示した。表1は、LCPUFA’sARA、EPAおよびDHAが、分子のフラックスを低下させ、上皮の抵抗性を改善していることを表している。対照的に、コントロール実験は、パルミチン酸が、逆の効果を有す、すなわち障壁の完全性を損なうことを表す。これらの結果は、本発明による組成物におけるEPA、DHAおよびARA、特にARAの有利な使用を示しており、本発明による方法、例えば障壁の完全性の改善のための方法における使用を示している。これらの結果はさらに、脂肪酸と不消化性オリゴ糖の本組み合わせの相乗的な効果を裏付けている。図1は、基底障壁の完全性における、様々な脂肪酸パルミチン酸、DHA、GLAおよびAAの、時間および濃度依存的効果を示している。図1は、抵抗性の増加に反映される通り、LCPUFA’sAA、DHA、およびGLAが、上皮の障壁の完全性を改善することを表している。これらの結果は、本発明による組成物における、EPA、DHA、GLAおよびARA、特にARAの有利な使用を示しており、本発明による方法、すなわち障壁の完全性の改善のための方法における使用を示している。これらの結果はさらに、脂肪酸と不消化性オリゴ糖の本組み合わせの相乗的な効果を裏付けている。実施例2:IL4に介在される障壁の破損における、LCPUFAの効果腸管上皮細胞株T84の単層を、トランスウェルフィルターにて培養し、粘膜性および漿膜性の両サンプリングおよびヒト腸管上皮細胞の刺激を行えるようにした。集密状態となった後二週間、単層を、IL4の存在下、多価不飽和脂肪酸ARA、DHA、GLA、EPAまたはコントロールであるパルミチン酸を添加して、または添加せずに培養した。細胞を、IL4培養に先駆けて、48時間ARA、DHA、EPAまたはパルミチン酸存在下にて前培養した。IL4と、PUFA’sおよびパルミチン酸の共培養を、さらに48時間続け;一方で培養培地および添加物を24時間毎に交換した。上皮の障壁の機能は、実施例1に記載した通り経上皮の抵抗性および透過性を測定することで決定した。統計的評価は実施例1に記載の通りに行った。IL4に介在される障壁の破損における、ARA、DHA、EPAおよびパルミチン酸の効果の結果を表2に示した。表2は、LCPUFA’sARA、DHAおよびEPAが、IL4によって引き起こされるフラックスの増加を阻害することを表している。対照的に、パルミチン酸は、有害な効果を有し、コントロールと比較して障壁の破損を減少させた。これらの結果は、IL4が介在する障壁の破損、例えば食物または牛乳アレルギーを予防するまたは低減させるために、臨床用および乳児用栄養性製剤における、ARA、DHAおよびEPAの有利な使用を示している。これらの結果はさらに、脂肪酸と不消化性オリゴ糖の本組み合わせの相乗的な効果を裏付けている。図2は、IL4が介在する障壁の破損における、様々な脂肪酸パルミチン酸、DHA、GLAおよびARAの、時間および濃度依存的な保護効果を示している。図2は、4kDデキストランフラックスの減少に反映される通り、ARA、DHAおよびGLAが、IL4が介在する障壁の破損から保護することを表している。これらの結果は、IL4が介在する障壁の破損、例えば食物または牛乳アレルギーを予防するまたは低減させるために、臨床用および乳児用栄養性製剤における、ARA、DHAおよびGLAの有利な使用を示している。これらの結果はさらに、脂肪酸と不消化性オリゴ糖の本組み合わせの相乗的な効果を裏付けている。実施例3:酢酸塩生成におけるオリゴ糖の効果微生物を、ミルク人工栄養で育った乳児の新鮮な便から得た。生まれて1から4ヶ月の間の乳児から採った新鮮な便の材料を、溜め、保存培地に2時間入れた。基質として、プレバイオティクス混合物91の比率;イヌリン;オリゴフルクトースイヌリン混合物11の比率を用い、または何も用いなかった。トランスガラクトオリゴ糖は、VivinalGOSBorculoDomoIngredientsから得て、不消化性オリゴ糖として:33重量の二糖、39重量の三糖、18重量の四糖、7重量の五糖および3重量の六、七、八糖を含む。イヌリンは、Oraftiactivefoodingredientsより、RaftilineHPとして得て、平均DPは23である。培地:McBainMacFarlane培地:緩衝ペプトン水30gl、イーストエクストラクト25gl、ムチン08gl、トリプトン30gl、LシステインHCl04gl、胆汁酸塩005gl、K2HPO43H2O26gl、NaHCO302gl、NaCl45gl、MgSO47H2O05gl、CaCl20228gl、FeSO47H2O0005gl。500mlScottビンを培地で満たし、121°Cで15分間滅菌する。緩衝培地:K2HPO43H226gl、NaHCO302gl、NaCl45gl、MgSO47H2O05gl、CaCl20228gl、FeSO47H2O0005gl。K2HPO4またはNaHCO3で、pH63±01に調整。500mlScottビンを培地で満たし、121°Cで15分間滅菌する。保存培地:緩衝ペプトン200gl、LシステインHCl05gl、チオグリコール酸ナトリウム05gl、レザズリン錠剤を1リッター当り1錠。1MNaOHまたはHClで、pH67±01に調整。電子レンジで沸騰させる。血清ビンを25mlの培地で満たし、121°Cで15分間滅菌した。新鮮な便サンプルを、保存培地と混合し、4°Cで数時間保存した。便の保存溶液を、13000rpmで15分間遠心し、上清を除き、便をMcBainMacFarlane培地と、重量比1:5で混合した。この便懸濁液3mlを、ビンの中で、85mgのグルコースもしくはプレバイオティクスとあわせ、または何も添加せず、十分に混合した。t0のサンプルを取り出した。残りの懸濁液の25mlを、透析チューブに移し、60mlの緩衝培地を満たした60mlビンに入れた。ビンはしっかりとふたを閉め、37°Cでインキュベートした。サンプルを、皮下注射器を用いて、透析チューブまたは透析バッファーから、3、24、および48時間後に採り、即座に氷上に置き発酵を停止した。本実験は、以下のサンプルを用いて行った。185mgTOS285mgイヌリン385mgTOSイヌリン91の比率、および485mgOSイヌリン11の比率。SCFA酢酸塩、プロピオン酸塩、酪酸塩を、水素炎イオン化検出器を備えた、Varian3800ガスクロマトグラフを用いて定量化した。サンプル05μlを、キャリアーガスとしてヘリウムを用いて、カラムに80°Cで注入した。サンプルの注入の後、オーブンを16°Cminの速度で160°Cまで加熱し、その後20°Cminの速度で220°Cまで加熱し、最終的に220°Cで15分間維持した。注入器および検出器の温度は200°Cであった。2エチル酪酸を、内部標準として用いた。図3は、異なるオリゴ糖の発酵による、絶対的図3Aおよび相対的図3BSCFAプロファイルを示している。図3Aは、90未満の単糖単位での相同性および異なる鎖長を有する、二つの異なるオリゴ糖の混合物TOSイヌリンが、単一の成分よりも、線維1グラム当りのSCFA特に酢酸塩の量の有意なおよび相乗的な増加をもたらすことを表している。図3Bは、TOSイヌリンの組み合わせの添加が、有益な酢酸塩のより高い比率をもたらすことを表している。invivoの酢酸塩の生成は、杯状細胞による改善された粘膜生成および腸の粘膜層の厚さの程度に言い換えられる実施例4参照。これらの結果は、本組成物の有利な使用を示している。実施例4:粘膜生成におけるSCFAの効果単層の腸の上皮T84細胞を24または96ウェル組織培養プレートにて培養した。T84を、002540mMの濃度範囲にて短鎖脂肪酸酢酸塩、プロピオン酸塩および酪酸塩とともに、24時間培養した。上清およびまたは細胞を回収し、MUC2ムチン発現を検出した。ムチンは非常に大きな糖タンパク質であり、ウエスタンブロッティング技術で扱うには難しいため、ドットブロット技術にて、細胞培養のMUC2発現を検出した。この方法は、免疫前血清T84をネガティブに染色、CCD18Coネガティブコントロール細胞およびウシ血清アルブミンを用いて確認した。細胞サンプルをLaemmliタンパク質単離バッファーにて回収し、マイクロプロテインアッセイを用いて、説明書に従って、タンパク質検出を行った。サンプルをニトロセルロース膜にドットした。膜を、TBST5Protivarでブロックし、続いて抗MUC2抗体オランダ、ロッテルダム、エラスムス大学Einerhand博士のご好意による提供で1時間インキュベートした。洗浄の後、ブロットをヤギ抗ウサギHRPでインキュベートし、基質による検出のために、ECLを用いた。濃度測定を、LumiImagerを用いて行い、シグナルをライトユニットで表した。BLU’sはまた、コントロールのインキュベートに対して相対値で表した。MUC2発現におけるSCFAの刺激の効果を比較するため、基本のMUC2発現の値を差し引いた。図4は、腸の上皮細胞および上皮間充組織細胞の共培養のMUC2発現に対するSCFAの異なる効果を表している。図2はまた、プロピオン酸塩、酪酸塩と比較して、酢酸塩が、MUC2発現粘膜生成をより強く刺激することを表している。それゆえ、オリゴ糖酢酸塩生成の亢進を示す実施例3参照の本組み合わせは、粘膜生成の刺激に特に有用であり、障壁の完全性の刺激のための方法において好都合に使用できる。実施例5:乳幼児用調乳I成分リッター当り、エネルギー672Kcal;タンパク質15g;乳清カゼイン比6040脂肪36g炭水化物72gビタミンA750RE;混合型天然カロチド400IUビタミンD106mcgビタミンF74mgビタミンK670mcgビタミンBsub11000mcgビタミンBsub21500mcgビタミンBsub6600mcgビタミンBsub12シアノコバラミン20mcgナイアシン90mcg葉酸80mcgパントテン酸3000mcgビオチン90mcgビタミンC90mgコリン100mgイノシトール33mgカルシウム460Mg亜リン酸333Mgマグネシウム64Mg鉄80Mg亜鉛60Mgマンガン50mcg銅560mcgヨウ素100mcgナトリウム160mgカリウム650mg塩素イオン433mgおよびセレン14mcgここにおいて脂肪含量は、魚の油3グラムおよび40アラキドン酸3グラム;さらに、4グラムのトランスガラクトオリゴ糖Elix’or商標および4グラムのRaftiline商標を含む。