"水膨潤性粘土鉱物と溶媒とを含有し、前記溶媒と前記水膨潤性粘土鉱物の合計質量に対する水膨潤性粘土鉱物の質量比率が50以上であり、全固形分中の前記水膨潤性粘土鉱物の質量比率が80以上であることを特徴とする培養床。前記層の厚みが1nm~50μmである請求項1記載の培養床。水溶性有機化合物を含有する請求項1又は2記載の培養床。前記水溶性有機化合物がビタミン類から選ばれる少なくとも一種である請求項1~3のいずれかに記載の培養床。請求項1~4のいずれかに記載の培養床を支持体上に積層した培養基材。請求項1~4のいずれかに記載の培養床を製造するための培養床用組成物であり、溶媒中に水膨潤性粘土鉱物を0.1~3分散させた培養床用組成物。請求項1~4のいずれかに記載の培養床を用いた細胞培養方法。水膨潤性粘土鉱物を溶媒中に分散させて得られた分散液、もしくはさらに水溶性有機化合物を含む分散液を支持体に塗付し、その後溶媒を除去することにより前記水膨潤性粘土鉱物の薄層を形成する培養床の製造方法。本発明が解決しようとする課題は、上記従来技術の問題点を解決し、高培養性を有する培養床を提供することにある。また、本発明が解決しようとする他の課題は、高培養性を有し、且つ生物由来の材料を全く使用しないか、その使用量を最小限に抑えた非生物由来材料を主成分とした培養床を提供することにある。本発明者等は、上記課題を解決すべく鋭意研究した結果、水膨潤性粘土鉱物Aを含有する培養床が各種細胞に対する良好な培養性を示すことを見出し、本発明を完成するに至った。即ち、本発明は、水膨潤性粘土鉱物と溶媒とを含有し、前記溶媒と前記水膨潤性粘土鉱物の合計質量に対する水膨潤性粘土鉱物の質量比率が24以上であり、全固形分中の前記水膨潤性粘土鉱物の質量比率が80以上であることを特徴とする培養床を提供する。また、本発明は、上記水膨潤性粘土鉱物Aを含有する培養床の製造方法であって、前記水膨潤性粘土鉱物Aを水媒体に混合した後、分散液Lを製造する第1工程、前記分散液Lを支持体に塗布し、その後乾燥することにより前記水膨潤性粘土鉱物Aの薄層を形成する第2工程、を行なうことを特徴とする培養床の製造方法を提供する。本発明の培養床の最大の特徴は、上記水膨潤性粘土鉱物Aがタンパク吸着とそれに伴う細胞の接着、増殖を担うことにある。本発明の培養床は、水膨潤性粘土鉱物Aがほぼ均一な層状構造になっている薄層から構成されており、これを各種の支持体上に積層することにより細胞培養基材として使用することができる。本発明の培養床は、培養液中のタンパク質成分を表面に多く吸着でき、続いて細胞の良好な接着伸展増殖高培養性を可能にし、培養される細胞は従来通りの方法で剥離回収できる特徴を有する。また、本発明の製造方法は、電子線照射のような方法を使用することなく、該培養床をプラスチック製培養容器のような支持体に容易に接着させることができ、装置と工程が簡便である特徴を有する。本発明に用いる水膨潤性粘土鉱物Aは、層状に剥離可能な水膨潤性粘土鉱物が挙げられ、好ましくは水または水と有機溶剤との混合溶液中で膨潤し均一に分散可能な粘土鉱物、特に好ましくは水中で分子状単一層またはそれに近いレベルで均一分散可能な無機粘土鉱物が用いられる。具体的にはナトリウムを層間イオンとして含む水膨潤性ヘクトライト、水膨潤性モンモリライト、水膨潤性サポナイト、水膨潤性合成雲母、等が挙げられる。これらの粘土鉱物を混合して用いても良い。本発明の培養床は、溶媒と水膨潤性粘土鉱物の合計質量に対する水膨潤性粘土鉱物の質量比率が50以上、好ましくは70以上、さらに好ましくは90以上含有する層により形成される。本発明の培養床の厚みは50μm以下であることが好ましく、さらに好ましくは15μm以下、特に好ましくは50nm以下である。50μm以上であると乾燥工程で亀裂を生じ、支持体から培養床水膨潤性粘土鉱物層が脱落する可能性がある。前述の厚みであれば水膨潤性粘土鉱物が乾燥工程で亀裂や脱落することなく、かつ細胞接着と増殖に効果がある。本発明の培養床は水溶性有機化合物、例えば防腐剤や抗菌剤、着色料、香料、酵素、たんぱく質、コラーゲン、合成ペプチド類、糖類、アミノ酸類、ビタミン類、細胞、DNA類、塩類、水溶性有機溶剤類、界面活性剤、高分子化合物、レベリング剤などを含むことができる。水溶性有機化合物を含む全固形分と粘土鉱物の比率は、全固形分中の水膨潤性粘土鉱物の質量比率が80以上であり、83以上であることが好ましく、85以上であることが特に好ましい。かかる質量比であれば培養床として特性が十分に発揮できる。本発明で使用する支持体とは例えば、糸状、フィルム状、板状、ディッシュ状、多孔体状などの人工物や骨、血管、脂肪、皮膚などの生体由来組織など、細胞を接着増殖させるための足場を言う。本発明にいう細胞培養用組成物とは水膨潤性粘土鉱物を必須として水媒体等の溶媒の分散液であれば特に限定されない。例えば水、または水と混和性を有する溶剤及び/またはその他の化合物を含む水溶液であってよく、その中には更に、防腐剤や抗菌剤、着色料、香料、酵素、たんぱく質、コラーゲン、合成ペプチド類、糖類、アミノ酸類、ビタミン類、細胞、DNA類、塩類、水溶性有機溶剤類、界面活性剤、高分子化合物、レベリング剤などを含むことができる。本発明にいう細胞培養用組成物は水膨潤性粘土鉱物を0.1~3、好ましくは0.1~2、さらに好ましくは0.1~1の濃度で含有する。かかる濃度であれば、容易に支持体を被覆することができる。本発明の培養床に用いられる培養床用組成物は、例えば、糸状、フィルム状、板状、ディッシュ状、多孔体状である金属、セラミック、プラスチック、ガラス、スポンジ等の平滑表面または凹凸表面を有する支持体に被覆して細胞培養基材として用いられる。本発明にいう細胞培養方法とは多細胞生物から細胞を分離し、体外で増殖、維持することである。本発明の培養床を用いる細胞培養方法であれば特に限定されない。例えば、生体から分離し、最初の植え替えを行う初代培養、既存の培養細胞生体外で培養されている細胞のことを新たな培養容器へと移し替えて増殖、維持する継代培養、三次元構造物上に増殖される三次元培養などがあげられる。次いで、本発明の培養床の製造方法について説明する。本発明は、下記の方法で製造することができる。前記水膨潤性粘土鉱物Aを水媒体等の溶媒に混合し、分散液Lを製造する第1工程、前記分散液Lを基材に塗布し、その後乾燥することにより前記水膨潤性粘土鉱物Aの薄層を形成する第2工程を行なうことを特徴とする培養床の製造方法である。なお、本発明の培養床は非ゲル状の培養床である。非ゲル状とは、水を大量に含まず、膨潤収縮挙動を取らず、ゾル-ゲル転移を行わない状態を指す。この製造方法に用いられる水膨潤性粘土鉱物Aは、前記の説明で述べたのと同じものを使用できるので、省略する。本発明の製造方法に用いる水媒体は、水膨潤性粘土鉱物Aを含むことができ、分散液が得られれば良く、特に限定されない。例えば水、または水と混和性を有する溶剤及び/またはその他の化合物を含む水溶液であってよく、その中には更に、防腐剤や抗菌剤、着色料、香料、酵素、たんぱく質、コラーゲン、合成ペプチド類、糖類、アミノ酸類、ビタミン類、細胞、DNA類、塩類、水溶性有機溶剤類、界面活性剤、高分子化合物、レベリング剤などを含むことができる。水膨潤性粘土鉱物Aの水媒体に対する濃度質量は好ましくは2以下、さらに好ましくは1以下、より好ましくは0.8以下である。水膨潤性粘土鉱物Aの水媒体に対する濃度質量が上記であると、非ゲル状の良好な分散液Lが得られ、支持体への塗布が容易で、平滑で均一な薄い塗膜が得られ、好ましい。本発明の製造方法で製造される分散液Lは、そのまま使用してもよいし、水洗や濾過などによる精製工程を経てから使用してもよい。また該分散液Lに更にレベリング剤や界面活性剤、ペプチド、たんぱく質、コラーゲン、アミノ酸類、ビタミン類、高分子化合物などを添加して使用してもよい。本製造方法の第2工程における、前記分散液Lの支持体への塗布方法は、公知慣用の方法でよい。例えば、分散液を支持体に流延させる方法や、バーコーターやスピンコーターによるコーター法、または噴霧などのスプレー法、模様のあるゴム版に分散液をつけてから支持体に転写する方法、また支持体に塗布しない部分を予め遮蔽して塗布後遮蔽部分を取り除くパターン状塗布や、インクジェットプリンター方式による分散液の塗布方法が挙げられる。細胞が接着や増殖しない支持体例えばコロナ放電処理をしていないポリスチレン表面に、分散液Lを種々パターン状に塗布することにより、浮遊系細胞、例えばマクロファージやリンパ球、と接着細胞、例えば血管内皮細胞や間葉系幹細胞、などとの共培養、接着細胞同士の共培養、細胞をシート状で剥離させることも可能になる。乾燥方法も、分散液L中の揮発成分が揮発し、水膨潤性粘土鉱物Aの薄層ができれば、任意の方法でよい。例えば、室温自然乾燥、室温の風や加熱または熱風による乾燥、遠赤外線乾燥などがあげられる。或いは分散液をスピンコーターで回転しながら熱風を当てたり加熱したりする方法も挙げられる。また、本発明の溶媒としては、水膨潤性粘土鉱物Aを溶解でき、且つ一定以上の水溶性を有する溶剤を用いることができる。ここで言う水溶性を有する溶剤とは、水100gに対し50g以上溶解できる溶剤であることが好ましい。例えば、水溶性溶剤としては、ジメチルアセトアミド、ジメチルホルムアミドなどのアミド類、メタノール、エタノール、2-プロパノールなどのアルコール類、ジメチルスルホキシド、テトラヒドロフランなどが挙げられる。これらの溶剤を混合して用いても良い上記の製造方法は、水膨潤性粘土鉱物Aの比率を調整することにより、細胞の増殖速度を幅広く調整することができるという特徴を有する。以下、実施例により本発明を具体的に説明するが、本発明の範囲がこれらの実施例にのみ限定されるものではない。実施例1この実施例は培養床を製造する例である。[水膨潤性粘土鉱物Aを含む分散液の調製]水膨潤性粘土鉱物AとしてLaponiteXLGRockwoodAdditivesLtd社製0.08g、水20g、を均一に混合して分散液Lを調製した。[水膨潤性粘土鉱物Aからなる培養床の作製第2工程]直径35mmのポリスチレン製シャーレ旭テクノグラス株式会社製、に、上記水膨潤性粘土鉱物Aの分散液L1を入れ、スピンコーターを用いて2000回転で該分散液をシャーレの表面に薄く塗布した後、80°Cの熱風乾燥器中で10分間乾燥させ、50°Cの精製水で2回、滅菌水で1回洗浄することで、水膨潤性粘土鉱物Aの薄層からなる培養床1を作成した。培養床1の厚みを透過型電子顕微鏡TEMで計測すると、約20nmであった。また、含水率は6、含クレイ率は94であった。[培養試験]このようにして得られた培養床1を5枚用いて、細胞の培養を行った。培養する細胞は、正常ヒト真皮線維芽細胞DSファーマバイオメディカル株式会社製を使用した。培養は、ウシ胎児血清バイオウエスト社製を10含有するダルベッコ変法ミニマムエッセンシャルイーグル培地和光純薬製を使用して、5二酸化炭素含有37°C恒温器内で行った。また、5枚のディッシュには全く同じ条件で細胞の播種を行った。播種細胞数は一枚のディッシュあたり10万個の細胞を播種した。細胞を含む培地の播種量は2mlとした。播種してから1日後、4日後、1週間後、これらの培養床1の表面を光学顕微鏡にて観察したところ、細胞が培養床1上に接着して、また十分に増殖していた様子が鮮明に確認することが出来た。一週間培養した細胞を005トリプシン/053mMEDTAナカライテスク社製を用いて回収し、再播種したところ、良好な接着と増殖が確認できた。比較例1細胞培養用ディッシュファルコン3003ベクトンディッキンソン社製以下,TCPSディッシュを何も表面処理を行わずに使用して、細胞培養を行った。細胞及び培地、培養条件は実施例1と同様にして行った。比較例2細胞培養用ディッシュファルコンコラーゲンIコート354456ベクトンディッキンソン社製以下、コラーゲンコートディッシュを使用して、細胞培養を行った。細胞及び培地、培養条件は実施例1と同様にして行った。この培養床は、I型コラーゲンをポリスチレンディッシュ表面に吸着させたものである。比較例3細胞培養用ディッシュBDピュアコートアミン354721ベクトンディッキンソン社製を使用して、細胞培養を行った。細胞及び培地、培養条件は実施例1と同様にして行った。この培養床は、ポリスチレンディッシュ表面にアミド基を化学修飾したものである。比較例4細胞培養用ディッシュBDピュアコートカルボキシル354773ベクトンディッキンソン社製を使用して、細胞培養を行った。細胞及び培地、培養条件は実施例1と同様にして行った。この培養床は、ポリスチレンディッシュ表面にカルボキシル基を化学修飾したものである。比較例5細胞培養用ディッシュセルバインド3294コーニングインターナショナル社製を使用して、細胞培養を行った。細胞及び培地、培養条件は実施例1と同様にして行った。この培養床は、ポリスチレンディッシュ表面をマイクロウェーブ処理したものである。実施例1、および比較例1~5の培養1日後、4日後、1週間後のATP産生量を調べるために、リン酸緩衝生理食塩水PBS和光純薬製2mLで培養表面を洗浄し、細胞のATP試薬和光純薬製0.5mLを添加し、10分後にマルチプレートリーダーMTP810Lab日立製作所製の発光測定モードで検出した。培養試験の結果を表-1に示す。表1に示されるように、培養床1を用いた培養によると、TCPSディッシュ比較例1に勝り、コラーゲンコートディッシュに比較例2迫る細胞増殖が確認できた。また、市販の合成品コートディッシュ比較例3~5のいずれよりも細胞増殖効果があることが実現できた。水膨潤性粘土鉱物を薄膜化させたものは、良好な細胞増殖を示す培養床となることが表-1で明らかとなった。実施例2実施例1と同様に水膨潤性粘土鉱物AとしてLaponiteXLG0.16g、水媒体Wとして水10g、を均一に混合して分散液L1を調製した。この分散液0.3gを直径15mmのガラス松波ガラス社製にコートし、室温で18時間乾燥させ、培養床2が作製できた。培養床2の厚みをデジタルインジケーターSONYU12Bで測定したところ、約13μmであった。また、含水率は11、含クレイ率は89であった。ベクトンディッキンソン社製24ウェルプレート353047に培養床2を入れ、細胞培養に使用した。播種細胞、培地、培養条件は実施例1と同様で、播種した細胞数は13万個である。播種してから1日後、4日後に培養床2の表面を光学顕微鏡にて観察したところ、細胞が培養床2上に接着して、また十分に増殖していた様子が鮮明に確認することが出来た。また、1日後と4日後のATP産生量を添加する細胞のATP試薬の量を0.2mLとするほかは実施例1と同様の手法で確認した結果を表―2に示す。実施例3分散液L1にアスコルビ酸リン酸エステルマグネシウム塩n水和物和光純薬社製を最終濃度0.28mMで添加する以外は実施例2と同様に作製し、厚み約13μmの培養床3が作製できた。また、含水率は13、含クレイ率は87であった。アスコルビ酸リン酸エステルマグネシウム塩n水和物の含有量はクレイの0.005であった。細胞及び培地、培養条件は実施例2と同様にして行った。播種してから1日後、4日後に培養床3の表面を光学顕微鏡にて観察したところ、細胞が培養床3上に接着して、また十分に増殖していた様子が鮮明に確認することが出来た。また、1日後と4日後のATP産生量を実施例2と同様の手法で確認した結果を表―2に示す。比較例6細胞培養用24ウェルプレート353047ベクトンディッキンソ社製を使用して、細胞培養を行った。細胞及び培地、培養条件は実施例2と同様にして行った。播種してから1日後、4日後の表面を光学顕微鏡にて観察したところ、細胞が接着して、また十分に増殖していた様子が鮮明に確認することが出来た。また、1日後と4日後のATP産生量を実施例2と同様の手法で確認した結果を表―2に示す。以上の実施例2,3および比較例6の結果より、水膨潤性粘土鉱物にビタミンCの誘導体であるアスコルビ酸リン酸エステルマグネシウム塩n水和物を含有させることで、さらに良好な細胞増殖を示す培養床となることが表-2で明らかとなった。比較例720°Cの恒温室において、内部を窒素置換した平底ガラス容器に、超純水57.06gとテフロン登録商標製攪拌子を入れ、攪拌しながら1.44gのラポナイトXLGを加え、無色透明の溶液を調製した。これにNIPANイソプロピルアクリルアミド6.78gを加え、窒素雰囲気内で攪拌して無色透明溶液を得た。次に、KPSペルオキソ二硫酸カリウム水溶液3gとTEMEDNNN’N’テトラメチルエチレンジアミン48μlを攪拌しながら無色透明溶液に加えた。この溶液をあらかじめ窒素雰囲気中に静置して容器内の酸素を除去しておいた蓋付きのポリスチレン製容器9cm×15cm3枚にそれぞれ酸素にふれないようにして移した後、密栓をし、20°Cの恒温水槽中で20時間静置して重合を行った。なお、これらの溶液調製から重合までの操作は、全てクリーンベンチ内にて行い、さらに酸素を遮断した窒素雰囲気下で行った。重合開始から20時間後に、ポリスチレン製容器内に無色透明で均一なシート状のヒドロゲルAが得られた。次に、シート状のヒドロゲルAを、20°Cで2Lの超純水に2日間浸漬して、ヒドロゲルを膨潤させてから取り出し、次いで50°Cの超純水1Lに12時間浸漬して、ヒドロゲルを収縮させてから取り出した。該洗浄による精製操作を3回繰り返した後、精製したシート状のヒドロゲルAを、直径8cmの大きさに切断し、ヒドロゲルAからなる細胞培養基材Aとした。このヒドロゲルの含水率は84、含クレイ率は2、クレイ/樹脂比は0.2である。それを細胞培養用ディッシュベクトンディッキンソンラブウェア社製ファルコン3003の中に移し替えてから蓋をして37°Cで静置した。この時細胞培養基材Aは、疎水化されたため、完全に白色化していた。なお、これらの精製から細胞培養ディッシュ内に細胞培養基材Aを移し替えるまでの操作は、すべてクリーンベンチ内で行った。この細胞培養基材Aを使用すると、確かに細胞培養基材A表面で細胞の接着増殖は確認できる。しかしながら、細胞培養基材Aはゲル状であるために、水を大量に含み、膨潤収縮挙動を取るため、細胞培養ディッシュ支持体との固着性が無く、支持体上に積層させることが出来ない。比較例8直径35mmのポリスチレン製シャーレ旭テクノグラス株式会社製、に、上記水膨潤性粘土鉱物Aの分散液L1を入れ、粘土鉱物の含有量が9、含水率が91となった培養床を作成した。この培養床を使用して実施例1と同様の培養試験を行ったところ、細胞は足場に接着伸展しなかった。このことから、粘土鉱物の含有量が9、含水率が91の足場は培養床として使用できないことが理解できる。直径35mmの低接着細胞培養容器EZ-BindShut、旭テクノグラス社製の一部分に実施例2で作製した分散液L1を直径約15mmになるよう0.3gをコートし、室温で18時間乾燥させ、培養床4が作製できた。含水率は10、含クレイ率は90であった。培養する細胞は、正常ヒト静脈由来血管内皮細胞倉敷紡績株式会社製を使用した。培養は、HuMedia培地倉敷紡績株式会社製を使用して、5二酸化炭素含有37°C恒温器内で行った。播種した細胞数は10万個である。播種してから1日後、4日後に培養床2の表面を光学顕微鏡にて観察したところ、細胞が培養床3上にのみ接着増殖して、培養床をコートしていない表面では細胞が接着しなかった様子が鮮明に確認することが出来た。実施例4~8、比較例9~11実施例2と同様に水膨潤性粘土鉱物AとしてLaponiteXLG0.24g、水媒体Wとして水10g、を均一に混合して分散液L1を調製した。この分散液0.5gを直径22mmのガラス松波ガラス社製にコートした。乾燥時間を変えることで、含水率と含クレイ率が異なる培養床実施例4~8、比較例9~11を作製した。含水率及び含クレイ率の測定方法は、まず、ガラスを入れた培養皿Aの重量を測定し、そこに分散液を加えた重量Bを測定した。室温環境下で乾燥し、B1の重量を測定した。含クレイ率は下記の式で求めた。含クレイ率=0.024×{B-A}/{B1-A}×100各含クレイ率のコートクレイ上にCHO-K1細胞JCRB9018,ヒューマンサイエンス研究資源バンクを1×105細胞播種した。37°C、5CO2雰囲気下で1日培養を行い、細胞の接着伸展を確認した。含クレイ率と細胞の接着伸展の関係は表-3の通りである。表-3での結果から、含クレイ率が50以上で良好な培養性を発現することがわかる。実施例9、10、比較例12~15実施例2と同様に水膨潤性粘土鉱物AとしてLaponiteXLG0.16g、水媒体Wとして水10g、を均一に混合して分散液L1を調製した。また、寒天和光純薬、010-158150.16g、水媒体Wとして水10g、を均一に混合して分散液L2を調製した。L1、L2を混合することで、全固形分中の含クレイ率の異なる分散液L3を調製し、この分散液0.3gを直径18mmのガラス松波ガラス社製にコートし、一晩室温で乾燥した。各含クレイ率のコートクレイ上にCHO-K1細胞JCRB9018,ヒューマンサイエンス研究資源バンクを1×105細胞播種した。37°C、5CO2雰囲気下で1日培養を行い、細胞の接着伸展を確認した。含クレイ率と細胞の接着伸展の関係は表-4の通りである。表-4の結果から、全固形分中の含クレイ率が80以上で良好な培養性を発現することがわかる。実施例11、比較例16~18実施例2と同様に水膨潤性粘土鉱物AとしてLaponiteXLG0.16g、水媒体Wとして水10g、を均一に混合して分散液L1を調製した。また、メタノール9.8g、重合開始剤Dとして1-ヒドロキシシクロヘキシルフェニルケトンイルガキュアー184チバガイギー社製0.2gを、均一に混合した溶液250μlをポリジメチルアクリルアミド9.9g、水媒体Wとして水100gの混合液中に入れ、均一に分散させた後、365nmにおける紫外線強度が40mW/cm2の紫外線を180秒照射し分散液L4を作製した。L4を水媒体で希釈し、水膨潤性粘土鉱物と同質量の分散液L5を調製した。L1、L5を混合することで、全固形分中の含クレイ率の異なる分散液L6を調製し、この分散液0.3gを直径18mmのガラス松波ガラス社製にコートし、一晩室温で乾燥した。実施例9,10と同様に細胞の接着伸展を確認した。含クレイ率と細胞の接着伸展の関係は表-5の通りである。表-5の結果から、全固形分中の含クレイ率が80以上で良好な培養性を発現することがわかる。上記実施例及び比較例から、本発明の培養床は、他の材質の支持体との間、良好な接着性を有し、優れた細胞培養機能を有している。また、この培養床は、極短時間で、容易に製造できることが明らかであった。"