"光合成細菌を光合成が起きる条件及びアルコール存在下で培養する段階を含むことを特徴とする、光合成バクテリアを利用した水素生産方法。前記光合成細菌は、ロドバクター属バクテリアであることを特徴とする、請求項1に記載の光合成バクテリアを利用した水素生産方法。前記光合成細菌は、ロドバクタースフェロイデスRhodobactersphaeroides、ロドバクターカプスラタスRhodobactercapsulatus、ロドバクターアピグメンタムR.apigmentum、ロドバクターアゾトフォルマンスR.azotoformans、ロドバクターブラスティカスR.blasticus、ロドバクターグルコニカムR.gluconicum、ロドバクターリトラリスR.litoralis、ロドバクターマシリエンシスR.massiliensis及びロドバクターベルドカンピR.veldkampiiで構成される群から選択される一つ以上であることを特徴とする、請求項1に記載の光合成バクテリアを利用した水素生産方法。前記アルコールは、メタノール、エタノール、プロパノール、イソプロパノール及びブタノールで構成される群から選択される一つ以上であることを特徴とする、請求項1に記載の光合成バクテリアを利用した水素生産方法。前記アルコールは、窒素固定酵素を活性化させることを特徴とする、請求項1に記載の光合成バクテリアを利用した水素生産方法。前記方法は、アンモニアの存在下で行われることを特徴とする、請求項1に記載の光合成バクテリアを利用した水素生産方法。前記方法による水素生成は、培地内に添加されたアルコールが消費されないことを特徴とする、請求項1に記載の光合成バクテリアを利用した水素生産方法。前記アルコールは、培地に約0.05体積~2体積で含まれることを特徴とする、請求項1に記載の光合成バクテリアを利用した水素生産方法。前記アルコールは、前記光合成細菌の接種と同時に及び/または、培養初期に添加されることを特徴とする、請求項1に記載の光合成バクテリアを利用した水素生産方法。前記光合成は、約20°C~37°C、嫌気または微好気、及び約3~300W/m2の光条件で行われることを特徴とする、請求項1に記載の光合成バクテリアを利用した水素生産方法。本願は、前述した従来の諸問題点を解決するために案出されたもので、水素生産に係る酵素の活性及び安定化を通して、光合成細菌を利用した水素生産方法及び水素生産効率を増大させる方法を提供する。本願は、光合成細菌を光合成が起きる条件及びアルコール存在下で培養する段階を含む、光合成バクテリアを利用した水素生産方法を提供する。本願はまた、前記光合成細菌は、ロドバクター属バクテリアの光合成バクテリアを利用した水素生産方法を提供する。本願はまた、前記光合成細菌は、ロドバクタースフェロイデスRhodobactersphaeroides、ロドバクターカプスラタスRhodobactercapsulatus、ロドバクターアピグメンタムR.apigmentum、ロドバクターアゾトフォルマンスR.azotoformans、ロドバクターブラスティカスR.blasticus、ロドバクターグルコニカムR.gluconicum、ロドバクターリトラリスR.litoralis、ロドバクターマシリエンシスR.massiliensis及びロドバクターベルドカンピR.veldkampiiで構成される群から選択される一つ以上である、光合成バクテリアを利用した水素生産方法を提供する。本願はまた、前記アルコールは、メタノール、エタノール、プロパノール、イソプロパノール及びブタノールで構成される群から選択される一つ以上である、光合成バクテリアを利用した水素生産方法を提供する。本願はまた、前記アルコールは、窒素固定酵素を活性化させるものである、光合成バクテリアを利用した水素生産方法を提供する。本願はまた、前記方法は、アンモニアの存在下で行われるものである、光合成バクテリアを利用した水素生産方法を提供する。本願はまた、前記方法による水素生成は、培地内に添加されたアルコールが消費されないことを特徴とする、光合成バクテリアを利用した水素生産方法を提供する。本願はまた、前記アルコールは培地に約0.05体積~2体積で含まれる、光合成バクテリアを利用した水素生産方法を提供する。本願はまた、前記アルコールは、前記光合成細菌の接種と同時に及び/または、培養初期に添加されるものである、光合成バクテリアを利用した水素生産方法を提供する。本願は、光合成細菌を光合成が起きる条件のアルコール存在下で培養する段階を含む光合成バクテリアの水素生産効率増進方法を提供する。本願の水素生産方法は、既存の水素生産方法と比較して2倍4モルH2/モル基質以上に水素生産効率が増進され、またアンモニウムイオンの存在する条件でも既存の方法と比較して10倍5~6モルH2/モル基質以上の増進効果を示した。このような本願の方法は、特に廃有機物に多量に含まれたアンモニウムイオンの存在程度に関係なく常に一定水準の水素生産が可能であって、経済性、活用度及び実用性に優れる。また、本願の水素生産方法は、水素エネルギーの生産技術であると同時にCO2発生低減技術であり、環境にやさしい廃棄物の処理と共に用いられる場合にも非常に有用である。さらにロドバクター属の光合成微生物を用いる場合、このような微生物は、現在、藻類及び魚類の飼料として利用されており、有用な二次代謝産物を同時に生産できるため、水素生産後に残るバイオマスと代謝産物を確保する二次的な工程と連係してその経済的価値を極大化させることができる。本願では、光合成細菌に種々の物質を添加して、水素生成能に及ぼす影響を試験して、アルコールが光合成細菌の水素生成能を画期的に増加させることを発見して本発明を完成した。従って、本願は、一様態で本願は光合成細菌を光合成が起きる条件及びアルコール存在下で培養する段階を含む光合成バクテリアを利用した水素生産方法に関するものである。さらに、本願は、他の様態で光合成細菌を光合成が起きる条件及びアルコール存在下で培養する段階を含む光合成バクテリアの水素生産効率増進方法に関するものである。本願で、前記光合成細菌は、紅色非硫黄細菌purplenon-sulfurbacteria、紅色硫黄細菌purplesulfurbacteria、緑色非硫黄細菌greennon-sulfurbacteria、または、緑色硫黄細菌greensulfurbacteriaである。一実現例で本願の光合成細菌は、紅色非硫黄細菌であるロドバクター属微生物である。一実現例で前記ロドバクタースフェロイデスRhodobactersphaeroides、ロドバクターカプスラタスRhodobactercapsulatus、ロドバクターアピグメンタムR.apigmentum、ロドバクターアゾトフォルマンスR.azotoformans、ロドバクターブラスティカスR.blasticus、ロドバクターグルコニカムR.gluconicum、ロドバクターリトラリスR.litoralis、ロドバクターマシリエンシスR.massiliensis及びロドバクターベルドカンピR.veldkampiiで構成される群から選択される。他の実現例で前記ロドバクタースフェロイデスは、ロドバクタースフェロイデスRhodobactersphaeroidesまたはロドバクターカプスラタスRhodobactercapsulatusである。さらに他の実現例ではロドバクタースフェロイデスRhodobactersphaeroidesである。本願で光合成が起きる条件とは、光合成細菌の明反応を導くための条件であり、適切な量の光、温度、空気を必要とし、当業者は光合成細菌の具体的な種類によって最適の条件を決められる。例えば、光合成は、約20~37°C、嫌気または微好気及び約3~300W/m2の光条件で行われる。微好気条件とは、酸素濃度約5以下の条件である。一実現例では、光合成は10W/m2の光、嫌気、30°Cの条件で120時間行われる。ロドバクタースフェロイデスは、窒素固定酵素の作用を介して水素ガスを生産し、従ってこの酵素活性度の大きさによって水素生成量が決定される。しかし、発生した水素を用いる酵素であるニッケル-鉄含有水素酵素uptake-Hydrogenase,Appeletal.2000.ArchMicrobiol.173:333-338の作用により水素生成量が減少しうる。従って、ロドバクタースフェロイデスの水素生成効率は、二つの酵素の相対的な活性程度によって決定されるといえる。本願の方法に用いられるアルコールは、特に制限はないが、例えば、メタノール、エタノール、プロパノール、イソプロパノール、またはブタノールを含む。一実現例で、前記アルコールは、エタノール、プロパノール、またはブタノールである。他の実現例で、前記アルコールは、ブタノール、またはエタノールである。本願のアルコールは、細胞の成長を妨げない範囲まで添加され、培地に対し約0.05体積~2体積で含まれる。ある実現例でアルコールは約0.1~1の濃度で用いられる。本願はまた、前記アルコールは、これに制限されるものではないが、前記光合成細菌の接種と同時に、または培養初期に添加されうる。培養初期とは、細胞接種後細胞の濃度が約1~150KU範囲の場合をいう。一様態で、本願の方法は、アルコールによる窒素固定酵素の活性化によるものである。本願に用いられたアルコールの量は、追加生成された水素ガスの量に比べて非常に僅かな量で、添加されたアルコールが光合成細菌、例えば、ロドバクタースフェロイデス内で代謝され、そのエネルギーを利用することで、水素生成能力が増進されたものではなく、細胞内アルコールによる窒素固定酵素の活性化によるものである。従って、他の様態で、本願の方法による水素生成は、培地内に添加されたアルコールが消費されない。アルコールが消費されない場合、連続的な水素生産工程で反応器内にエタノールを追加的に入れなくても、増進された水素生産性を維持することが可能で、水素生産効率を増大させることができる。窒素固定酵素の活性度を測定した結果、エタノールの添加時に窒素固定酵素の活性は、対照群に比べて約4倍増加し図2、窒素固定酵素を発現できない変異株の場合、このような効果が観察されなかったが図3、これはアルコールによる窒素固定酵素の活性増進及びこれに伴う水素生成能の増進と見られる。従って、本理論で限定するものではないが、本願のアルコール使用による光合成細菌の水素生成能増進は、窒素固定酵素の活性によるものである。他の様態で、本願の方法は、アンモニウムイオンの存在下でも水素を効率よく生産できることに関する。アンモニウムイオンによる窒素固定酵素活性の阻害は、ロドバクター属を利用した水素生成において克服しなければならない課題の中の一つであるが、本発明の方法による水素生成は、アンモニウムイオンの存在による阻害効果に敏感ではない。窒素固定酵素の発現及びその活性は、培地内にアンモニウムイオンが存在する場合、種々の調節因子の作用によって非常に顕著に減少することになるMasepohletal.2002.J.Mol.Microbiol.Biotechnol.4:243-248。これは、窒素固定反応が非常に多くのATPを消費する反応であるためである。このような調節は、大きく三段階に分けられるが、最も上位段階の調節は、窒素固定酵素を発現させる遺伝子であるnifHDKの転写活性因子であるNifAに対する調節である。NtrCは、アンモニウムがない条件においてNtrBによってリン酸化され、リン酸化されたNtrCがnifA遺伝子の転写水準を高めることになり、PII蛋白質であるGlnBは、この過程でNtrBと結合してこの作用を助ける。NifAの活性調節が二番目の段階であり、この段階はPII蛋白質であるGlnBとGlnKなどが関連して、このようなNifAに対する活性調節によって窒素固定酵素の転写程度が決定されることになる。最後の段階の調節は、既に翻訳された窒素固定酵素の活性に対する調節であり、アンモニウムイオンの濃度によりDraT及びDraG蛋白質が関与して窒素固定酵素の最終活性を決めることになる。具体的に、光合成細菌、例えば、ロドバクタースフェロイデスの水素発生は、窒素固定酵素nitrogenaseの活性によるもので、培地内の窒素源が充分でない場合、窒素固定酵素は、アンモニウムNH4イオンを合成する役割を果たすと同時に水素ガスを発生させるWalletal.1975.Nature258:630-631。しかし、窒素固定酵素の活性は、アンモニウムイオンによって抑制されるため、水素生成もアンモニウムイオンの存在によって阻害を受けることになる。これは、特に廃有機物を利用した水素生成時において、アンモニウムイオンの濃度を調節するに当たり追加費用が必要とされる問題点であるが、本願の方法を用いる場合、アンモニアの存在中でも水素生産が可能になり、このような問題が解決された。本理論で限定するものではないが、アンモニウムイオンの存在を認知して、窒素固定酵素の活性を調節する因子であるPII蛋白質の作用抑制による現象であると考えられる。本願は、光合成細菌が光合成成長条件で水素を発生する特性を利用して、培地内にアルコールを添加して窒素固定酵素の活性増進を導いて、これに伴う水素生成能を向上させるものであって、このような特徴を含む限り、光合成細菌を利用した公知の水素生産工程を本願の方法に導入して用いることができる。光合成バクテリアを用いた一般的水素生産方法は、公知になっており、例えば、Leeetal.2002.Appl.Microbiol.Biotechnol.60:147-153、Kimetal.2006.Int.J.HydrogenEnergy31:121-127、韓国特許第0680624号に記載のものが挙げられ、具体的な光合成培養条件、アルコールの量は用いる光合成菌株の種類によって適切に決められる。以下、実施例に基づいて本発明をより一層詳細に説明するが、下記実施例は、本発明を例示するためのものであって、本発明の内容を限定するものではない。実施例1:エタノール存在下で光合成細菌を利用した水素生産水素生産をため、ロドバクタースフェロイデス2.4.1ATCCBAA-808、Cohen-Bazireetal.1956.J.Cell.Comp.Physiol.49:25-68、またはロドバクタースフェロイデスKCTC12085を対象菌株として用い、この菌株等の成長のために、シストロム最少培地[20mMリン酸二水素カリウムKH2PO4、3.8mM硫酸アンモニウムNH42SO4、34mMコハク酸succinate、0.59mML-グルタミン酸L-glutamate、0.30mML-アスパラギン酸L-aspartate、8.5mM塩化ナトリウム、1.05mMニトリロ三酢酸nitrilotriaceticacid、1.2mM塩化マグネシウムMgCl26H2O、0.23mM塩化カルシウムCaCl27H2O、25M硫酸鉄IIFeSO47H2O、0.16Mモリブデン酸アンモニウムNH46Mo7O244H2O、4.7MEDTA、38M硫酸亜鉛ZnSO47H2O、9.1M硫酸マンガンMnSO4H2O、1.6M硫酸銅CuSO45H2O、0.85M硝酸コバルトIICoNO3H2O、1.8Mホウ酸H3BO3、8.1Mニコチン酸、1.5Mチアミン塩酸、41nMビオチンbiotinSistrom、W.R、1962.J.Gen.Microbiol.28:607-616を基本培地として用いた。場合によっては、窒素固定酵素の活性を最適化するために、モリブデン酸アンモニウムを同量のモリブデン酸ナトリウムに代替して用い、硫酸アンモニウムを排除してその代わりL-グルタミン酸を7mMの濃度に増やして用い、コハク酸を30mMのマレイン酸malateに代替して用いた。アンモニウムイオンの効果を確認するためには、培地に2mMの塩化アンモニウムを添加した。ロドバクタースフェロイデス菌株108CFU/mlをシストロム最少培地10mlに接種した後、これを10W/m2の光条件で30°C、嫌気条件、120時間、菌株を培養して、水素生成能力を試験した。水素の生成量を測定するために、細胞は空気が漏れないように考案されたビンserumvialに入れて、光が与えられる培養器で成長させた。瓶内部の酸素除去のためにアルゴンargonで置換した後、成長を始めさせた。時間が経過したら空気層gasphaseの一部を空気が漏れないように考案された注射器ガスタイトシリンジ:gas-tightsyringeを介して取り出して、ガスクロマトグラフィーGasChromatography、GC、Shimadzuで分析した。図1は、光合成条件のロドバクタースフェロイデス2.4.1野生型菌株WTの累積水素生産量及び成長曲線を示す。アンモニウムイオンが存在するシストロム最少培地を利用して試験を行い、エタノールEtOHは、最終濃度が各0.1及び0.5になるべく添加し、エタノールを添加しなかった対照群と同時に試験した。各実験条件で菌株の成長には大きな差が見られなかった。シストロム最少培地を用いる場合、成長がほぼ完了した時点から水素が発生するが、エタノールを添加しなかった対照群では、0.52モルH2/モルコハク酸の水素生成効率を示した。これに対して、エタノールが各0.1及び0.5になるべく添加された実験群は、各5.04モルH2/モルコハク酸及び5.72モルH2/モルコハク酸の水素を発生して、10倍以上の水素生産性増進効果が示された。実施例2:エタノール添加時の窒素固定酵素活性測定窒素固定酵素の活性は、アセチレンC2H2を基質として、エチレンC2H4が生成される速度を利用して測定した。窒素固定酵素は、基質として、窒素ガスN2以外にもプロトンH及びアセチレンを還元して各々水素ガスH2及びエチレンを生成する能力を持つ。従って、アセチレンの還元程度を介して窒素固定酵素の活性を測定することができるKernetal.1992.Appl.Microbiol.Biotechnol.37:496-500。ロドバクタースフェロイデス菌株を10W/m2の光が与えられる光合成条件で成長させて窒素固定酵素の活性度を試験した。10mlの細胞108CFU/mlをバイアル瓶65mlに入れて、光が与えられる培養器で成長させ、150から200の間のKlettUnitKUまで育った細胞を実験に用いた。実験中の追加的な蛋白質合成を防ぐために、蛋白質合成阻害剤であるクロラムフェニコールchloramphenicolを50μg/mlの濃度で添加した後、内部のガスをアルゴンで置換した。アセチレンは、全体空気層の10となるようにガスタイトシリンジを利用して注入した。暗条件で10分間培養した後、10W/m2の光を与えて反応を始めさせた。エチレンの量は、時間が経過したら空気層の一部をガスタイトシリンジを介して取り出してガスクロマトグラフィーで分析した。図2は、光合成条件で培養されたロドバクタースフェロイデス菌株の窒素固定酵素活性を示す。エタノールを培地内に0.2で添加した場合と、エタノールを添加しなかった対照群に対して試験を行った。その結果、エタノールの添加時に窒素固定酵素の活性は、18.2nmoleKU-1h-1と示され、対照群の活性である4.7nmoleKU-1h-1に比べて約4倍が増加する現象が見られた。従って、エタノール添加によるロドバクタースフェロイデスの水素生成能の増進は、窒素固定酵素活性の増加によって行われたことが確認された。実施例3:窒素固定酵素欠損変異株製造及びエタノールの水素生成増進効果試験ロドバクタースフェロイデス2.4.1の染色体DNAを公知の方法のとおり分離して、これを鋳型としてN-末端にNifD制限酵素部位を含む約0.6kbの断片と、C-末端にNifKに制限酵素部位を含む約0.7kbの断片と、を重合酵素連鎖反応を利用して合成したNifD-Forward:5’-CCGAGACCAACATGAAGC-3’、NifD-Reverse:5’-TCGCGATATGGTGGC-3’、NifK-Forward:5’-TACCGCATGTATGCG-3’、NifK-Reverse:5’-CGAACGAGATGTCGG-3’。さらに、前記断片をT-ベクターInvitrogenのStuI部位に2.0kbの転写/翻訳終結ストレプトマイシンstreptomycin及びスペクチノマイシンspectinomycin抵抗性遺伝子、Smr/SprPrentki,P.,andKrisch,H.M.1984GeneAmst.29,303-313をリガーゼで連結した後、得られたDNA断片を自殺ベクターsuicidevectorpLO1LenzOetal.1994.J.Bacteriol.176:4385-4393にクローニングした。クローニングされた構造物は、pLO1ベクター上に存在するカナマイシンkanamycin抵抗性遺伝子を利用して、カナマイシン、ストレプトマイシン、スペクチノマイシンを各々25、50、50μg/mlの濃度で用いて大腸菌E.coli内で選別してpDCS100を収得した。前記組み換えベクターを大腸菌S17-1に形質転換transformationした後、ロドバクタースフェロイデスに下記方法で接合を介して入れた。ベクターを含む大腸菌細胞を対象宿主細胞と混ぜた後、平板培地に乗せて6時間から12時間程度接合が起きるようにした後、該当抗生剤Sm、Spが添加されたシストロムSistrom限定平板培地に塗抹して形質転換された宿主細胞を得た。大腸菌S17-1は、アミノ酸中プロリンprolineを合成できない栄養要求変異株auxotrophであり、プロリンが欠乏した限定平板培地で育たなく、形質転換されなかった宿主細胞は、抗生剤カナマイシンを25μg/mlの濃度で添加した培地で育たないため、抗生剤抵抗性を持つ形質転換された宿主細胞を確保することができる。それと共に、pLO1ベクターは自殺ベクターであり、ロドバクタースフェロイデス内で複製されないため、相同組み換えhomologousrecombinationを介して、ロドバクタースフェロイデス2.4.1の染色体上に単一交差singlecrossoverが導かれた。また、pLO1ベクターは、レバンスクラーゼLevansucraseをコードグするsacB遺伝子を含有しており、スクロースsucroseが存在する培地でスクロースのポリマーを形成して細胞を殺すことになる。従って、ストレプトマイシンとスペクチノマイシンを各50μg/mlの濃度で用いてスクロースを15の濃度で平板培地に添加して、ストレプトマイシンとスペクチノマイシンに対しては抵抗性を示すと同時にカナマイシンに対しては敏感性を示す二重交差doublecrossoverコロニーを選別した。このコロニーは、窒素固定酵素の単量体中NifD及びNifKを発現できないように構成された変異株として窒素固定酵素の活性を示すことができない。ロドバクタースフェロイデス野生型菌株及び前記窒素固定酵素欠損菌株NifDKmutantを10W/m2の光が与えられる実施例1の光合成条件で成長させて、水素ガスの生成程度を試験した。アンモニウムイオンが存在するシストロム最少培地を利用して試験し、細胞の成長及び水素生成誘導、そして生成された水素ガスの分析は実施例1の方法と同様に行われた。図3は、光合成条件のロドバクタースフェロイデス菌株の累積水素生産量を示す。実験条件で二つの菌株の成長において大きな差は見られなかった。野生型菌株では図1の結果と同様にエタノールによる水素生成増進効果が観察された反面、窒素固定酵素欠損菌株ではエタノール添加有無と関係なく水素の生成が観察されなかった図3。従って、エタノール添加に伴う水素生成増加現象は、窒素固定酵素の活性によるものであることが確認された。実施例4:アンモニウムイオンの存在有無に伴うエタノールの水素生成増進効果試験本発明の内容に基づいて、エタノールを利用して水素を生産する場合にも窒素固定酵素のアンモニウムイオンによる活性阻害現象が起きるか否かを確認した。実施例1に記載されたようにロドバクタースフェロイデス野生型菌株を10W/m2の光が与えられる光合成条件で成長させて、水素ガスの生成程度を試験した。アンモニウムイオンの効果を確認するために、最適な水素生成のためにアンモニウムが除去された変形培地Leeetal.2002.Appl.Microbiol.Biotechnol.60:147-153と、この培地に2mMの塩化アンモニウムを添加した二つの条件で行った。生成された水素ガスの分析は、実施例1の方法と同様に行われた。菌体の成長速度は、エタノールの添加可否と関係なく、0mMアンモニウムイオン条件が2mMアンモニウムイオン条件より全般的に遅れたが、成長を終えた時の細胞数は、全ての条件においてほぼ同じであった図4。前記組成が変形された培地を利用して細胞を成長させると、細胞成長初期から水素ガスが発生する。水素ガスの測定結果、0.2のエタノール添加条件では、0mMのアンモニウム存在時と比較した時、2mMのアンモニウム存在時にも80以上の水素生成能が残存した図4。これは、エタノールが添加されなかった対照群では、アンモニウム存在時の水素生成能が10以下となり大きく減少するのに対して、画期的に向上したアンモニウムイオンに対する抵抗性を示す図4。エタノールが添加された場合には、アンモニウムイオンが存在しても窒素固定酵素の活性は80以上を維持した。実施例5:多様な紅色非硫黄細菌purplenon-sulfurbacteriaを対象にしたエタノールの水素生成増進効果試験紅色非硫黄細菌purplenon-sulfurbacteriaとして、ロドバクタースフェロイデスRhodobactersphaeroides以外にも水素生産のために代表的に用いられる菌株であるロドバクターカプスラタスRhodobactercapsulatus及びロドスピリルムラブラムRhodospirillumrubrumを対象にして、エタノール添加による水素生成増進可否を確認した。ロドバクターカプスラタスの亜種としては、SB1003を、ロドスピリルムラブラムの亜種としては、UR1を用い、これはこれらの菌株が各種内で最も広く研究された亜種であるためである。ロドバクターカプスラタススの成長のために、アンモニウムイオンが除去され変形されたシストロム最少培地を、ロドスピリルムラブラムの成長のためにはMG最少培地LehmanandRoberts.1991.J.Bacteriol.173:5705-5711を用いた。各菌株108cfu/mlを上述した各培地に接種した後、10W/m2の光が与えられる光合成条件30°C、嫌気条件で120時間培養しながら、成長させて水素ガスの生成程度を試験した。エタノールは、0.2の最終濃度になるように処理し、細胞の成長及び水素生成誘導、そして生成された水素ガスの分析は、実施例1の方法と同様に行われた。その結果、ロドバクターカプスラタスの水素生成量が、約1.5倍増進されたが、実験条件でロドスピリルムラブラムの水素生成増進効果は起きなかった。紅色非硫黄細菌の光合成培養時エタノールの添加に伴う水素生成増進可否増進倍数:アルコール添加時水素生成量/米添加時水素生成量実施例6:水素生成増進のためのエタノール添加最適濃度及び時期水素生成増進のためのエタノール添加の最適濃度及び添加時点を確認した。ロドバクタースフェロイデス菌株にエタノールの濃度を0.01~2の体積当たり体積濃度体積/体積で互いに異なるように添加して、光合成条件で成長させて累積水素生成量を測定した。1のエタノール添加条件とは異なり、2のエタノールが培地に添加されると、細胞成長が阻害され、この条件では水素生成量の増加程度が顕著に減少した。また、0.05未満の濃度でエタノールを添加した場合には、水素生成に対する誘導現象が殆ど見られなかった。従って、水素生成増進のために、エタノールの濃度を0.05から2の範囲以内で添加して用いることができるが、より好ましくはエタノールを0.1から1の濃度範囲内で添加して用いた方法が適切な方法といえる。図5は、エタノールの添加時点に伴う細胞の成長曲線及び累積水素生成量を示す。10KUになるように細胞を接種して細胞の成長を始めた場合、約24時間以後に細胞の数は300KU近所に達し、これ以上増えない。しかし、水素生成が確認される時点は、接種後30時間以後であり、細胞の数が増えない範囲にてエタノール誘導による水素生成が起きることになる。前記理由から、エタノールの培地内での添加時点を互いに異なるようにして、その効果を調べた。その結果、細胞の接種と同時10KU、または細胞成長初期100KU時点にエタノールが添加された場合に、細胞成長後期300KU時点にエタノールが添加された場合に比べて水素生成誘発効果がより大きく現れた図5。これは、水素が活発に発生する時点が接種してから30時間以後であっても、細胞成長序盤からエタノールが存在する場合に、その誘発効果が大きく現れる結果となり、細胞が活発に育つ間にエタノール作用に伴う水素生成活性誘導が、相当成り立つことが分かる。実施例7:水素生成培地内コハク酸及びエタノールの濃度変化分析培地内主要炭素源であるコハク酸とエタノールの濃度、及び窒素固定酵素の活性に影響を及ぼすアンモニウムイオンの効果を調べた。水素生成条件は、実施例1と同様である。培地内のコハク酸の濃度は、HPLCを利用して分析した。これのために、AminexHPX-87H有機酸カラムcolumn、Bio-Radを用いて、ろ過された30μlの培地を注入して分析した。その分析条件は、移動相として0.01M硫酸H2SO4を用いて、オーブン温度は60°C、移動相の移動速度を0.6ml/minにした。培地内エタノールの濃度は、アルコール酸化酵素alcoholdehydrogenaseを利用したEnzychromethanolassaykitBioassaySystems、Hayward、CAを用いて分析した。エタノールが培地に添加されても、コハク酸が炭素源として消費される速度は、エタノールを添加しなかった対照群とさほど差を示すことなく、細胞が成長する間持続的に消費されることが分かった表2。これとは異なり、エタノールは、培地内に初期に添加した濃度である5μl/ml0.5がそのまま残存する現象が見られた表3。従って、添加したエタノールは、コハク酸のように炭素源として用いられるのではなく、培地内にそのまま残存して窒素固定酵素の活性に影響を与えることが明らかになった。ロドバクタースフェロイデスの光合成培養時の培地内コハク酸の濃度変化ロドバクタースフェロイデスの光合成培養時の培地内エタノールの濃度変化実施例8:多様なアルコールalcoholを利用した水素生成増進効果試験エタノール以外のアルコール類に対する水素生成増進効果の可否を調べた。エタノール以外にもメタノール[methanol、CH3OH]、プロパノール[propanol、CH3CH2CH2OH]、イソプロパノール[isopropanol、CH32CHOH]、ブタノール[butanol、CH3CH22CH2OH]、イソアミルアルコール[isoamylalcohol、CH32CHCH2CH2OH]を利用して試験した。実施例1と同様な条件でロドバクタースフェロイデス野生型菌株に各アルコールを0.1、0.2、0.5、1.0の濃度で添加した後、10W/m2の光が与えられる光合成条件で成長させて、水素ガスの生成程度を試験した。メタノールを各濃度別に培地に添加した場合、1.0においてだけ細胞成長の阻害が見られたが、残りの条件では細胞の成長に大きな影響を及ぼすことはなかった。メタノールを0.1、0.2、0.5の濃度で処理した場合、水素ガス生成量が増加することが見られ、0.2添加された場合、その効果が最も大きく現れた図6。プロパノールを各濃度別に培地に添加した場合、0.1、0.2、0.5、1.0の全ての条件で、水素ガス生成量が増加することが観察され、0.5添加された場合、その効果が最も大きく現れた図6。イソプロパノールで処理した場合にも対照群に比べて約35程度の水素生成量を増進させることが明らかになったが、その効果は、エタノール、プロパノール、ブタノールに比べて僅かであった。ブタノールを各濃度別に培地に添加した場合、1.0を添加した条件を除いて0.1、0.2、0.5の条件で水素ガス生成量が増加することが観察され、0.2が添加された場合、その効果が最も大きく現れた図6。イソアミルアルコールで処理した場合には、細胞成長を顕著に抑制し、却って水素生成効率を低減させた。従って、ロドバクタースフェロイデスを利用した水素生成時、エタノール以外にもメタノール、プロパノール、イソプロパノール、ブタノールを添加して、水素生成効率増加を誘導することができ、より好ましくはエタノールの代わりにプロパノール、またはブタノールが用いられる。"