"MSCタイプの細胞をヒト多能性細胞から作製するための方法であって、ヒト多能性細胞を、a.各種FGF、HGF、各種PDGF、EGF、各種ヘルグリンherugulinおよび各種VEGFから選択される1つまたは複数の増殖因子、b.アスコルビン酸およびその誘導体、ビタミンEならびにN-アセチルシステインから選択される1つまたは複数の抗酸化剤を含む培養培地において培養する工程を含む方法。MSCタイプの細胞を誘導幹細胞から作製するための方法であって、誘導幹細胞を、a.各種FGF、HGF、各種PDGF、EGF、各種ヘルグリンherugulinおよび各種VEGFから選択される1つまたは複数の増殖因子、b.アスコルビン酸およびその誘導体、ビタミンEならびにN-アセチルシステインから選択される1つまたは複数の抗酸化剤を含む培養培地において培養する工程を含む方法。前記培養培地が、a.FGF;およびb.アスコルビン酸またはその誘導体の1つを含むことを特徴とする、請求項1または2に記載の方法。前記培養培地が、a.FGF-2;およびb.アスコルビン酸および/またはアスコルビン酸2-リン酸を含むことを特徴とする、請求項3に記載の方法。前記培養培地がFGF2を10ng/mlの最終濃度で含み、かつ、アスコルビン酸2-リン酸を1mMの最終濃度で含むことを特徴とする、請求項4に記載の方法。前記MSCタイプの作製された細胞が、CD73、CD29、CD44、CD166またはCD105のマーカーのうちの1つまたは複数を発現することを特徴とする、請求項1~5に記載の方法。前記MSCタイプの作製された細胞がSSEA4を発現することを特徴とする、請求項1~6に記載の方法。メバロン酸またはコレステロールに影響する医薬化合物を選択するための方法であって、請求項1~7に記載の方法によって得られる細胞を試験される医薬化合物と接触させるための工程を含む方法。メバロン酸またはコレステロールの代謝経路を調節する医薬化合物を選択するための方法であって、請求項1~7に記載の方法によって得られる細胞を試験される医薬化合物と接触させるための工程を含む方法。メバロン酸の合成を阻害する効果を高める医薬化合物を選択するための方法であって、請求項1~7に記載の方法によって得られる細胞を試験される医薬化合物と接触させるための工程を含む方法。メバロン酸の合成を阻害する効果を補う医薬化合物を選択するための方法であって、請求項1~7に記載の方法によって得られる細胞を試験される医薬化合物と接触させる工程を含む方法。メバロン酸の合成およびコレステロールの合成の機能的阻害剤である医薬化合物を選択するための方法であって、請求項1~7に記載の方法によって得られる細胞を試験される医薬化合物と接触させる工程を含む方法。筋肉組織に対する毒性効果を有する医薬化合物を選択するための方法であって、請求項1~7に記載の方法によって得られる細胞を試験される医薬化合物と接触させる工程を含む方法。筋萎縮または筋肉減少症から守る医薬化合物を選択するための方法であって、請求項1~7に記載の方法によって得られる細胞を試験される医薬化合物と接触させる工程を含む方法。抗腫瘍性の医薬化合物を選択するための方法であって、請求項1~7に記載の方法によって得られる細胞を試験される医薬化合物と接触させる工程を含む方法。骨組織を修復するための、請求項1~7に記載の方法によって得られる細胞。軟骨を修復するための、請求項1~7に記載の方法によって得られる細胞。白色脂肪細胞または褐色脂肪細胞を得るための、請求項1~7に記載の方法によって得られる細胞の使用。免疫調節細胞を得るための、請求項1~7に記載の方法によって得られる細胞の使用。本発明は、メバロン酸の合成に関与する分子を、とりわけ、多能性細胞に由来する分化した正常なMSC細胞またはMSCタイプの細胞を使用することによってスクリーニングするための方法に関連する。細胞試験を使用することによるハイスループットスクリーニングの効率は、使用される細胞試験の特異性、感度、ロバストネスおよび入手可能性に依存する。この問題は、治療分子をヒト種のためにスクリーニングするための非常に好適なモデルである正常なヒト細胞については特に重要である。実際、正常なヒト細胞の入手可能性が、ある種の細胞タイプ例えば、心臓細胞および神経細胞などについては特に制限される。一方で、正常なヒト細胞は、ハイスループットスクリーニングのためのその使用を制限する限定された複製能を有する。現在、HTSタイプのハイスループットスクリーニングのために使用される細胞の大多数はヒト以外の細胞であるか、あるいは、そうでなければ、このタイプのスクリーニングにおける単離された分子の関連性を低下させる形質転換されたヒト細胞または腫瘍由来のヒト細胞であるかのどちらかである。本発明は、多能性細胞に由来する分化した正常なMSC細胞またはMSCタイプの細胞を使用することによる、メバロン酸の合成に関与する分子のハイスループットスクリーニングのための方法に関連する。本発明はまた、多能性細胞に由来する分化した正常な細胞を作製するための方法に関連する。本発明はまた、メバロン酸の合成を薬理学的阻害剤の存在により制御することによる、多能性細胞に由来する分化した正常な細胞を使用するハイスループットスクリーニングのための方法に関連する。本発明の目的には、とりわけ、下記のものが挙げられる:1.MSCタイプの細胞をヒト多能性細胞から作製するための方法であって、ヒト多能性細胞を、a.各種FGF、各種HGF、各種PDGF、EGF、各種ヘルグリンherugulinおよび各種VEGFから選択される1つまたは複数の増殖因子、b.アスコルビン酸およびその誘導体、ビタミンEならびにN-アセチルシステインから選択される1つまたは複数の抗酸化剤を含む培養培地において培養するための工程を含む方法。2.MSCタイプの細胞を誘導多能性幹細胞から作製するための方法であって、誘導幹細胞を、a.各種FGF、HGF、各種PDGF、EGF、各種ヘルグリンherugulinおよび各種VEGFから選択される1つまたは複数の増殖因子、b.アスコルビン酸およびその誘導体、ビタミンEならびにN-アセチルシステインから選択される1つまたは複数の抗酸化剤を含む培養培地において培養するための工程を含む方法。3.培養培地が、a.FGF;およびb.アスコルビン酸またはその誘導体の1つを含むことを特徴とする、目的1または目的2による方法。4.培養培地が、a.FGF2;およびb.アスコルビン酸および/またはアスコルビン酸2-リン酸を含むことを特徴とする、目的3による方法。5.培養培地がFGF2を10ng/mlの最終濃度で含み、かつ、アスコルビン酸2-リン酸を1mMの最終濃度で含むことを特徴とする、目的4による方法。6.MSCタイプの作製された細胞が、CD73、CD29、CD44、CD166またはCD105のマーカーのうちの1つまたは複数を発現することを特徴とする、前記目的による方法。7.MSCタイプの作製された細胞がSSEA4を発現することを特徴とする、前記目的による方法。8.メバロン酸またはコレステロールに影響する医薬化合物を選択するための方法であって、目的1~目的7による方法によって得られる細胞を試験される前記医薬化合物と接触させるための工程を含む方法。9.メバロン酸またはコレステロールの代謝経路を調節する医薬化合物を選択するための方法であって、目的1~目的7による方法によって得られる細胞を試験される前記医薬化合物と接触させるための工程を含む方法。10.メバロン酸の合成を阻害することの効果を高める医薬化合物を選択するための方法であって、目的1~目的7による方法によって得られる細胞を試験される前記医薬化合物と接触させるための工程を含む方法。11.メバロン酸の合成を阻害することの影響を補償する医薬化合物を選択するための方法であって、目的1~目的7による方法によって得られる細胞を試験される前記医薬化合物と接触させるための工程を含む方法。12.メバロン酸の合成およびコレステロールの合成の機能的阻害剤である医薬化合物を選択するための方法であって、目的1~目的7による方法によって得られる細胞を試験される前記医薬化合物と接触させるための工程を含む方法。13.筋肉組織に対する毒性影響を有する医薬化合物を選択するための方法であって、目的1~目的7による方法によって得られる細胞を試験される前記医薬化合物と接触させるための工程を含む方法。14.筋萎縮または筋肉減少症から守る医薬化合物を選択するための方法であって、目的1~目的7による方法によって得られる細胞を試験される前記医薬化合物と接触させるための工程を含む方法。15.抗腫瘍性の医薬化合物を選択するための方法であって、目的1~目的7による方法によって得られる細胞を試験される前記医薬化合物と接触させるための工程を含む方法。16.骨組織を修復するための、目的1~目的7の方法によって得られる細胞。17.軟骨を修復するための、目的1~目的7の方法によって得られる細胞。18.白色脂肪細胞または褐色脂肪細胞を得るための、目的1~目的7の方法によって得られる細胞の使用。19.免疫調節細胞を得るための、目的1~目的7の方法によって得られる細胞の使用。本発明は、多能性細胞に由来する分化した正常なMSC細胞またはMSCタイプの細胞を使用することによる、メバロン酸の合成に関与する分子のハイスループットスクリーニングのための方法に関連する。この新規な方法の目標の1つが、ハイスループットスクリーニングのロバストネス、特異性および感度を、制限のない量で入手可能な正常なヒト細胞の供給源と、メバロン酸合成の調節剤とを連携させることによって増大させることである。細胞システムの特異性、感度、ロバストネスおよび入手可能性により、ハイスループットスクリーニングの関連性が決定される。非常に頻繁に、ハイスループットスクリーニングのために使用される細胞は、齧歯類ラット、マウスの細胞、または、形質転換されたヒト細胞である。自然発生的形質転換のかなり大きい確率を有する多くの齧歯類細胞とは異なり、正常なヒト細胞は有限の成長能を有しており、約50回の細胞分裂の後で老化に入る。ヒト細胞の延長された成長には、表現型の不安定性が付随する。これらの性質により、正常なヒト細胞をハイスループットスクリーニングのために使用することがかなり制限される。ヒト多能性幹細胞の存在は、正常なヒト細胞を何ら制限なく入手するという可能性をもたらす。2つのタイプの多能性細胞、すなわち、胚性幹細胞hESおよび誘導幹細胞iPSが存在する。多能性細胞が持つ本質的特徴は、制限を何ら伴わない自己再生の能力、および、生物体全体を構成するすべてのタイプの細胞への分化の可能性である。ヒト胚性幹細胞hESを使用することの、J.Thompsonの研究Thompson他、1998以後の可能性により、非常に数多くの可能性が広がっている。実験的には、ヒト胚性幹細胞は、多くのタイプの細胞心臓細胞、平滑筋細胞、神経細胞、ケラチノサイト、造血細胞、インスリン産生細胞の分化手法および単離の開発を可能にしている。しかしながら、胚性幹細胞の単離は、著しいノウハウを必要とする技術であるとともに、傷つきやすく、かつ、限定された生物学的材料、すなわち、余分な胚を入手することに依存する技術である。さらに、胚性幹細胞は、国に依存して国毎に解決される多くの倫理的問題を提起している。倫理面、規制面および工業所有権における様々な問題により、現在、胚性幹細胞の使用は制限されている。S.Yamanakaによって率いられる研究チームによるiPS細胞の発見TakahashiK.YamanakaS.,2006は、後者の可逆性、ならびに、ES細胞と非常に類似する性質自己再生、生物を構成するすべての細胞タイプへの分化能、および、許容する動物に注入されると、奇形腫を形成することができることを有するiPS細胞への非常に多様なタイプの細胞の脱分化および初期化がそれらの強制された同時発現により引き起こされ得る減少した数の遺伝子を示している。iPSを得るための制限は何ら存在しないようである。実際、初代細胞、不死化細胞、皮膚または肺の線維芽細胞、肝細胞、膵臓細胞、リンパ球および神経前駆体をiPS細胞に初期化することができた。多くの病状例えば、SMA、ALS、パーキンソン病またはデュシェンヌ型ジストロフィーなどに冒された患者の細胞に由来するiPS細胞もまた作製されているPark他、2008。したがって、この取り組みは、容易に入手できる生物学的材料からのiPS細胞の単離を可能にしている。最後に、これらの非常に数多くの研究はこの技術の質的ロバストネスを明瞭に示していることを付け加えなければならない。本発明の第1の部分は、HMGCoAレダクターゼメバロン酸の合成における重要な酵素の阻害剤に対して感受性のある、多能性細胞に由来する分化したMSC細胞またはMSCタイプの細胞を作製することに関連する。以前の研究では、筋肉組織に由来する細胞筋肉前駆体細胞MPCが各種スタチンに対して特に感受性であることが示されている。実際、スタチンの存在により、このタイプの細胞の成長が特異的に阻害される。本発明の記載される方法は、多能性細胞に由来する、すなわち、hES細胞およびiPS細胞に由来する、HMGCoAレダクターゼの阻害剤に対して感受性のある分化した細胞を作製することを可能にする。本発明の作製方法は2段階の方法であり、第1段階は多能性細胞からの分化方法であり、第2段階は、前記方法により分化させた細胞を増幅し、保存するための方法である。本作製方法の種々の工程が下記において記載される。本方法の原理は、多能性細胞に由来する未分化細胞クラスターの機械的解離または酵素的解離、および、コラーゲンまたはその誘導体例えば、ゼラチンなどからなる細胞支持体における播種によって分化を開始させることである。細胞が分化すると、細胞は、FGFファミリーから選ばれる増殖因子と、抗酸化剤例えば、アスコルビン酸の誘導体などとを含む培地において増幅される。この目的のために、他の増殖因子を使用することができ、例えば、HGF肝細胞増殖因子、様々なPDGF血小板由来増殖因子、EGF上皮増殖因子ファミリーから選ばれる因子、VGEFファミリーから選ばれる因子、各種ヘルグリンなどを使用することができる。本方法により、安定した表現型を有する分化した細胞を、量に関して何ら制限されることなく作製することが可能である。これらの細胞は、正常な核型および有限の成長によって特徴づけられる正常な表現型を有する。細胞タイプの定義多能性幹細胞多能性細胞は、2つの性質によって、すなわち、自己再生能と、成体の生物を構成するすべての細胞タイプを形成するという性質とによって特徴づけられる。分化によるこれらの細胞は3つの胚葉外胚葉、内胚葉、中胚葉の細胞を与え得る。本質的には、2つのタイプの多能性細胞、すなわち、胚性幹細胞と、多能性にまで誘導される細胞とが存在する。胚性幹細胞ES細胞胚性幹細胞は、胚盤胞段階にある胚に由来する多能性幹細胞である。これらの細胞の単離は、胚を用いることを必要とした。今日では、入手可能である非常に多数の系統の胚性幹細胞が世界中に存在する。誘導多能性幹細胞iPS細胞誘導多能性幹細胞iPSは、成体の体細胞を多能性細胞に初期化することから生じるものであり、現在のところ、大多数の場合において、初期化のために要求される遺伝子の移入によって得られる。これらの遺伝子には、ES細胞によって発現される遺伝子例えば、Sox2およびOct4など、および、増殖を制御する遺伝子例えば、cMyc、Lin28およびKlf4などが見出されている。iPS細胞はES細胞の本質的性質を有する。近い将来には、様々なiPSを、他の取り組み例えば、タンパク質の移入、小分子による処理などを使用することによって得ることが可能となる。中胚葉系前駆体細胞MePCMSC細胞が多能性細胞ESおよびiPSに由来する。これらの細胞は中胚葉に属しており、それらの成長については基質への付着に依存しており、また、著しいが、有限の成長能を有している。MSC細胞は一連の膜マーカー例えば、CD44、CD29、CD73、CD105およびSSEA4などを発現し、また、ある種の実験条件のもとでは、骨組織、軟骨組織および脂肪組織を形成することができる。中胚葉系の間質細胞または幹細胞MSC細胞成体において、MSCを非常に多数の組織から単離することができる。最初のMSC細胞が骨髄から単離された。第2の段階において、MSC細胞が、研究された組織のほとんどすべてにおいて見出された。これらの細胞は中胚葉に属しており、それらの成長については基質への付着に依存しており、また、有限の成長能を有している。MSC細胞は一連の膜マーカー例えば、CD44、CD29、CD73などを発現し、また、ある種の実験条件のもとでは、骨組織、軟骨組織および脂肪組織を形成することができる。MSC細胞またはMSCタイプの細胞MSC細胞またはMSCタイプの細胞は、多能性間質細胞の名でも知られている中胚葉系の幹細胞、同様にまた、同じ生物学的特徴を有する細胞を意味する。MSC細胞またはMSCタイプの細胞には、非限定的な様式において、成体組織の中胚葉系の前駆体細胞MePCおよび中胚葉系の間質細胞または幹細胞MSCが含まれる。筋肉前駆体細胞MPCMPC細胞は筋肉組織に由来し、筋肉組織から単離される。これらの細胞は、筋肉の機能を維持することに関わっており、また、筋肉組織の修復を制御する。MPCは限定的な様式で自己再生することができ、また、筋肉組織をエクスビボおよびインビボにおいて形成することができる。ヒト多能性細胞hESおよびiPSに由来するスクリーニング用の細胞を単離および作製するための手順の説明上記細胞を未分化のhES細胞またはiPS細胞から作製することができる。作製条件は下記の通りであり、両方の細胞タイプについて同一である。それらの形態学的特徴によって特定され得る未分化細胞の塊が、細胞を作製するための細胞材料の根幹をなすものである。形態学的基準に基づいて、または、発現基準例えば、Oct4/pouf5などの、多能性を維持することに関連する遺伝子プロモーターの制御下でのTra1-60の発現またはGFPの発現などに基づいて特定され得る未分化細胞の塊が、ニードルによって、双眼拡大鏡の管理下のもとで機械的に解離させられる。コラゲナーゼタイプおよびトリプシンタイプの酵素を使用することによる穏やかな酵素的解離もまた使用することができる。二価イオンのキレート化剤例えば、EDTAおよびEGTAなどを加えることもまた可能である。後者の場合には、Rhoaタンパク質の阻害剤Rock阻害剤の使用により、上記により解離させられた細胞のより良好な再開が可能になる。解離後に得られる細胞の小さいクラスターが自動計数されるか、または、血球計数器によって計数され、そして、生存性が、トリパンブルー排除またはヨウ化プロピジウム標識化の技術を使用することによって推定される。その後の工程が、細胞凝集物を、コラーゲンまたはその誘導体例えば、ゼラチンなどにより被覆された細胞支持体に播種することによって形成される。細胞外マトリックスの他の構成成分例えば、フィブロネクチン、ラミニン、ビトロネクチンなどまたは合成化合物例えば、ポリオルニチンpoly-omithineなどをこの工程のために使用することができる。その後、細胞は、グルタミンが補充され、かつ、非必須アミノ酸、ベータ-メルカプトエタノール、および、ウシ血清または別の起源から得られる血清例えば、ヒト血清などの混合物が補充されるDMEMタイプの培養培地の存在下で培養される。この操作を、動物起源のタンパク質を全く含まない完全合成培地において行うことができる。本発明の期間中、FGFと、抗酸化剤例えば、アスコルビン酸の誘導体などとの連携により、作製方法のロバストネスと、作製された細胞の作製速度および量との両方が大きくなったことを示すことができた。FGFをアスコルビン酸2-リン酸と組み合わせるこの取り組みを使用することによって、多能性細胞に由来する分化した細胞を、多能性細胞がhES細胞またはiPSであろうとも、種々のタイプの多能性細胞を用いた実験のすべてにおいて作製することができた。播種後5日で、細胞クラスターから現れ、その後、細胞分裂に入る、細胞基質に接着している個々の細胞を区別することが可能である。これが形態学的分化の第1段階である。10日目~20日目の間で、細胞は、EDTAタイプのキレート化剤と組み合わされるトリプシンタイプの酵素溶液を使用することによって移植される。機械的な解離を使用することもまた可能である。上記により得られた細胞は、コラーゲンにより、または、ゼラチンタイプのその誘導体により被覆された細胞支持体に播種される。第1段階の場合と同様に、別のタイプの基質を使用することが可能である。この第2段階が、細胞数の増大、および、上記により得られた細胞集団の均質化を可能にする細胞増殖工程である。最初の移植が行われるとすぐに、アスコルビン酸2-リン酸と連携されるFGFの存在は、細胞数を2倍増大させることを可能にし、その後、継代培養の期間中において、細胞数がこの組み合わせの存在下ではかなり増大する。その後、差が対数での倍数で数単位に達し得る。このタイプの細胞を、FGFおよび抗酸化剤例えば、アスコルビン酸およびその誘導体などを含有する合成培地において作製することもまた可能である。FGFが存在し、抗酸化剤が何ら存在しない場合、多能性細胞に由来する細胞の数を増大させることができないことは、注目すべきことである。上記により得られた細胞は、標準的な方法によって、例えば、DMSOを冷凍保存剤とする冷凍保存などによって保存される。この工程のために、市販の溶液と同様に、グリセロール、トレハロース、グリシンおよびアルブチンを凍結保護剤として使用することもまた可能である。保存がガラス化によって行われる場合がある。作製された細胞の冷凍保存は優れた収量を有しており、また、生物学的パラメーター例えば、細胞成長または表面マーカーの発現などを変化させない。これらの作製条件のもとでは、細胞は、有限の成長および正常な核型を有しながら、その正常な性質を保ち続ける。上記により作製された細胞のための記載された分化方法および増幅方法は、hESまたはiPSに由来する細胞について類似する効率を有する。両方の場合において、培養培地においてアスコルビン酸2-リン酸と連携されるFGFの組み合わせの存在は細胞分化方法および細胞増幅方法の効率を劇的に増大させる。ヒト多能性細胞hESおよびiPSに由来する分化した細胞の、スクリーニングのための特徴づけ最初の特徴づけ段階は機能的基準例えば、成長能、基質への接着などおよび形態学的基準に基づく。形態学的には、作製された細胞は、間葉系細胞の特徴と類似する特徴を有する。その成長は基質への付着に依存している。行われた分子分析では、多能性細胞の特徴的な多能性状態に関連する遺伝子例えば、Oct4、Nanogなどの発現が、RT-PCR技術によって、作製された細胞において検出できないことが示される。作製された細胞のフローサイトメトリーによる表面マーカーの分析では、多能性状態に関連する膜決定因子であるSSEA3、Tra-1-60、Tra-1-80の発現がないこと、そして、CD73、CD44、CD166、CD105およびCD29などの膜決定因子が存在することが示される。これらのマーカーの発現はまた、多能性間質細胞MSCにおいても存在する。MSC細胞が約10年前に他と区別された。したがって、本発明の方法によって作製される細胞もまた、下記のような、MSCのいくつかの性質を有する:基質への接着大きいが、有限の成長能凍結による保存CD73、CD29、CD44、CD166の各マーカーについての発現均一性骨形成性の分化能。培養培地におけるFGF2およびアスコルビン酸2-リン酸の組み合わされた存在は、本発明の方法によって作製される細胞の成長能およびSSEA4の発現を増大させる。本発明の方法では、FGF2およびアスコルビン酸2-リン酸の存在により、分化した細胞を多能性細胞から作製することが可能である。成長能におけるこの増大には、膜マーカーSSEA4の特異的な発現が伴う。この膜マーカーはまた、多能性細胞およびある種の神経系または中胚葉系の前駆体細胞によっても発現される。FGF2およびアスコルビン酸2-リン酸が個々には、SSEA4の発現を誘導するという可能性、または、増殖能を著しく増大させるという可能性をもたらさないことに留意することは、注目すべきことである。一方で、FGF2およびアスコルビン酸2-リン酸が一緒に存在することにより、成長能およびSSEA4の発現が、Tra-1-60、Tra-180、SSEA3およびSSEA1のような分化全能性に関連する他のマーカーの発現を改変することなく、かなり増大する。本発明の方法により、SSEA4を発現する分化した細胞を均一に作製することが可能である。本発明の方法によって記載されるこれらの作製条件のもとでは、分化した細胞は、SSEA4の発現を伴う著しい増殖能を有する。本発明の方法によって作製される細胞は、HMGCoAレダクターゼの阻害剤のようなメバロン酸合成の阻害剤に対する特異的な感受性を有する。メバロン酸は、細胞活性の鍵である代謝産物コレステロールの合成に不可欠な前駆体である。スタチン、すなわち、HMGCoAレダクターゼメバロン酸の合成を制御する酵素の立体的阻害剤は、メバロン酸の産生、したがって、コレステロールの産生を阻止する。メバロン酸が細胞外培地によって提供されることにより、コレステロールの産生を、スタチンが存在するにもかかわらず、回復させることが可能である。これらの性質は、とりわけ、メバロン酸合成の阻害剤の毒性を予測し、分析するための細胞試験を組み立てるという可能性をもたらす。MPC細胞のようなある種の細胞タイプが、スタチンに対して特に感受性がある。この細胞タイプにおいて、スタチンは毒性であり、だが、この毒性が、細胞外培地の存在下におけるメバロン酸の存在によってなくなる。したがって、簡便な細胞試験によって、スタチンが毒性であることを、メバロン酸の合成を伴う機構により示すことが可能である。COX2の阻害剤およびHMGCoAレダクターゼの阻害剤を用いる最近の例では、毒物学的問題を過小評価することは、ヒト、健康および経済の観点から、少なからぬ結果を有し得ることが示される。したがって、予測可能な毒物学システムを規定することが非常に重要な目標である。スタチンを含めて、HMGCoAレダクターゼの阻害剤は、筋肉組織については特段の毒性を有する。この毒性は、単純な痛みから、死を招き得る横紋筋融解にまで及び得る。ヒト筋肉前駆体細胞MPCは筋肉毒性の良好な指標物である。実際、MPCの細胞成長が成長培地におけるスタチンの存在によって阻害される。この阻害は用量依存的である。メバロン酸の存在は、この成長阻害を完全に解除するという可能性をもたらす。したがって、この阻害が、HMGCoAレダクターゼの阻害を介して、すなわち、メバロン酸コレステロールの合成における前駆体の産生に関わる酵素の阻害を介して達成される。本発明の方法に従って多能性細胞から作製される細胞は、HMGCoAレダクターゼの阻害剤について、MPCに匹敵する感受性を有する。実際、ノバスタチンまたはシンバスタチンのようなHMGCoAレダクターゼの阻害剤の培養培地における存在は、多能性細胞に由来する分化した細胞の数を用量依存的様式で低下させる。この阻害がメバロン酸の存在によって高まる。したがって、上記により認められた成長阻害は、メバロン酸の産生に関わる酵素の阻害に起因する。胚性幹細胞から作製される細胞、および、誘導多能性細胞から作製される細胞は、HMGCoAレダクターゼの阻害剤に対して、また、メバロン酸に対して同じタイプの感受性を有する。iPSの技術は、多能性細胞をどのような個体からでも作製するという可能性をもたらす。本発明の方法は、iPS細胞に由来する分化した細胞を、メバロン酸合成の阻害剤に対する悪化した感受性を有する患者から生じさせるという可能性をもたらす。これらの細胞ツールは、毒性機構を理解し、そして、この毒性を防止し、また、追跡するためのマーカーを単離するために有用である。本発明の方法によって作製される細胞はメバロン酸合成のハイスループットスクリーニングを可能にする。化合物のハイスループットスクリーニングでは、細胞をこの技術と適合し得る形式例えば、96ウエルまたは384ウエルのマルチウエルプレートなどで培養するという可能性が要求される。一方で、分析ロボットと適合し得る、結果を読み取るための迅速なシステムの使用もまた要求される。本発明の方法によって作製される細胞は96ウエルおよび384ウエルのマルチウエルプレートにおいて培養することができる。これらの条件のもとでは、細胞カウント数の変動係数が小さい。第1の段階において、マルチウエルで得られる細胞の数が、細胞を、画像分析システムを使用することにより標識化後に直接に計数することによって求められた。これらの分析システムは正確ではあるが、比較的、時間がかかる。したがって、ATPの量およびミトコンドリアの活性に基づく試験が開発された。本発明の方法によって作製される細胞については、直線関係が、測定されたATPの量またはミトコンドリアの活性と、ウエルあたりの細胞数との間に存在することを明らかにすることが可能であった。言い換えれば、ATPの量または測定されたミトコンドリア活性が細胞数の大きさである。ヒトの臨床診療において使用される主要な活性製造物を表す1,200超の化合物からなる化学分子のバンクがスクリーニングされた。本発明の方法によって記載される細胞は、このバンクをスクリーニングするという可能性をもたらした。これらの細胞が、メバロン酸の存在下および非存在下で、かつ、このバンクの種々の化合物の存在下で3日間、96ウエルおよび384ウエルのマルチウエルにおいて培養された。すべてのこれらの実験が、化合物の分配および無菌培地での細胞の培養を可能にするロボットにより行われた。化合物が下記の基準で選択された:メバロン酸の非存在下における細胞数の低下、および、メバロン酸の存在下において細胞数を維持すること。これらの基準により、その毒性がメバロン酸合成の阻害に関連づけられる分子を選び出すことが可能である。行われたスクリーニングのすべてにおいて、ヒトの臨床診療において使用され、バンクに存在するHMGCoAレダクターゼメバロン酸合成のための律速酵素の阻害剤を選択することができた。これらの実験により、本発明の方法に従って作製される細胞は、メバロン酸合成の阻害剤のスクリーニングを、ハイスループットスクリーニング技術を使用することによってロバストな様式で可能にすることを示すことができた。実現可能性がこのように立証されたことで、数十万個の異なる化合物を表すバンクを、上記により記載されるシステムを用いてスクリーニングすることを検討するという可能性が生まれる。分子は、機能的基準に基づいて、すなわち、メバロン酸合成の阻害に起因する細胞毒性に基づいて選び出されることにもまた留意しなければならない。これらのタイプの試験は、メバロン酸合成の他のクラスの阻害剤を単離するという可能性をもたらす。このシステムにより、新規な阻害剤を、HMGCoAレダクターゼとのそれらの直接的な相互作用に関係なく、それらの機能的能力に基づいて単離することが可能である。本発明の方法によって作製される細胞は、メバロン酸合成の阻害剤の毒性影響から守る化合物のハイスループットスクリーニングを可能にする。メバロン酸合成の阻害剤の毒性影響により、臨床診療におけるこのタイプの化合物の使用が制限されている。実際、筋肉組織に対する多くの二次的影響が認められており、だが、それらのほとんどが限定的であり、また、可逆的である。それにもかかわらず、多くの場合、処置された患者の20前後が筋肉の痛み筋痛、痙攣を有する。これらの影響は、非常に頻繁に、処置における中断を引き起こしている。メバロン酸合成の阻害剤の毒性影響を軽減し得る化合物を特定することは、臨床的重要性を有し得る目標である。このことを念頭において、スクリーニングが、メバロン酸合成の阻害剤例えば、HMGCoAレダクターゼの阻害剤などにより処理される本発明の方法によって作製された細胞を使用することによって行われる。スクリーニング条件が前記のようにもたらされ、細胞が、HMGCoAレダクターゼの阻害剤により、すなわち、シンバスタチンまたはこの薬物クラスの分子のすべてにより処理される。化合物は、シンバスタチンの毒性影響を軽減するそれらの能力に従って選別される。この取り組みを使用することによって、約10個の化合物を、1,200超の化合物からなるバンクにおいて選択することができた。これらは、このクラスの治療分子の毒性影響を軽減させるための潜在的な候補である。一方で、HMGCoAレダクターゼの阻害剤が、タンパク質、アトロギンatrogin、すなわち、筋萎縮の様々な現象に関与するタンパク質の発現を誘導することが示された。筋萎縮が多くの病理神経筋疾患、ガン、HIV、腎不全、加齢または不動化に関連し、筋萎縮はそれ自体が不良な予後因子である。上記により記載されるスクリーニングはまた、筋萎縮を制限し得る化合物を単離することを可能にする。実際、本発明の方法によって作製される細胞をHMGCoAレダクターゼの阻害剤により処理することにより、抑制された細胞萎縮のモデルを培養ディッシュにおいて再現するという可能性がもたらされる。本発明の方法によって作製される細胞については毒性をHMGCoAレダクターゼの阻害剤の存在下において制限する化合物は、筋萎縮を軽減し、かつ、筋肉減少症を処置するための潜在的な候補である。筋肉減少症は、加齢、神経学的疾患、ウイルス性疾患例えば、AIDSまたは腫瘍疾患に起因する筋肉の喪失である。これは、そのための特異的な治療的解決策が未だ何ら存在しない頻発する疾患である。本発明の方法によって作製される細胞は、メバロン酸合成の阻害剤の毒性影響を高める化合物のハイスループットスクリーニングを可能にする。細胞毒性をメバロン酸合成の阻害剤の存在下において高める化合物を予測するという可能性は、組織例えば、筋肉組織などのための潜在的毒性薬物の組み合わせを防止すること、または、腫瘍の処置のために有用である細胞毒性効果を有する薬物の組み合わせを明確化することのどちらをも可能にするにちがいない。ヒトの臨床診療においては、HMGCoAレダクターゼの阻害剤の毒性が、ある種の薬物組み合わせによって悪化し得ることが頻繁に認められている。一方で、各種スタチンが、ある種の形態の腫瘍消化器腫瘍、乳腫瘍またはリンパ腫の処置におけるそれらの細胞毒性のために、また、予防剤としてのそれらの可能な使用結腸ガンまたは前立腺ガンのためにこの数年前から使用されている。大多数の場合において、この後者の適応では、スタチンが他の抗腫瘍分子との併用で使用される。このことを念頭において、スクリーニングが、メバロン酸合成の阻害剤例えば、HMGCoAレダクターゼの阻害剤などにより処理される本発明の方法によって作製された細胞を使用することによって行われる。スクリーニングの条件が前記のようにもたらされ、細胞が、HMGCoAレダクターゼの阻害剤により、すなわち、シンバスタチンにより処理される。化合物は、シンバスタチンの毒性影響を高めるそれらの能力に従って選別される。この取り組みを使用することによって、約15個の化合物を、1,200超の化合物からなるバンクにおいて選択することができた。これらは、このクラスの治療分子の毒性影響を増大させるための潜在的な候補である。これらの化合物の中で、それらのいくつかは、その細胞毒性について既に知られている薬剤であり、いくつかが、抗腫瘍剤としてヒトの臨床診療において使用される細胞毒性剤である。一方で、科学的データおよび臨床データは、従来の抗腫瘍処置において認められる耐性現象に一方において関わる腫瘍幹細胞が存在することを示している。これらの腫瘍幹細胞は、上皮組織から中胚葉系組織への移行の結果である。腫瘍上皮細胞が中胚葉に向かって移行することにより、これらの細胞には、成長での利点、および、腫瘍を形成するためのより大きい能力が与えられる。腫瘍幹細胞は、多能性細胞に由来する分化したMSC細胞と共通する特徴をいくつか有する。実際、MSC細胞は、中胚葉系組織に向かって発達するための上皮として組織化される多能性細胞に由来する。分化期間中に、MSC細胞は上皮タイプから中胚葉タイプへの移行を受ける。さらに、MSC細胞は、腫瘍幹細胞によってもまた発現されるマーカーCD44を高いレベルで発現する。これらの議論により、多能性細胞に由来するMSC細胞はインビトロにおける腫瘍幹細胞のモデルを表すと考えることが可能である。その場合、記載されたスクリーニングは、腫瘍幹細胞に対抗する特異的活性を有する化合物を単離することを可能にする。スタチンの毒性を特異的に高める分子を選び出すスクリーニングにより、その抗腫瘍能を増大させるために、また、腫瘍幹細胞を標的とするためにスタチンと連携されなければならない分子を明確にするための合理的な戦略を確立することが可能である。本発明の方法によって作製される細胞を、メバロン酸の存在下または非存在下、メバロン酸合成の阻害剤の存在下または非存在下で使用することにより、下記のための化合物のハイスループットスクリーニングが可能になる:メバロン酸の合成を阻害することHMGCoAレダクターゼの阻害剤の二次的影響を弱めること筋肉毒性影響を有する薬物相互作用を防止すること筋萎縮を軽減することHMGCoAレダクターゼを阻害し、薬物の併用をそれらの抗腫瘍活性のために、具体的には腫瘍幹細胞に対して明確化する細胞毒性影響を可能にすること。上記により選び出された化合物の治療適用は非常に広い例えば、高コレステロール血症、様々な筋萎縮、同様にまた、腫瘍疾患。実施例1アスコルビン酸と組み合わされたFGF2は、多能性間質細胞MSCの特徴を有するヒト胚性幹細胞hESに由来する分化したMSC細胞またはMSCタイプの細胞を作製するための技術のロバストネスおよび効率を改善する。序論多能性間質細胞、すなわち、MSCが、約10年前に他と区別されている。ISCTInternationalSocietyforCellTherapy、国際細胞治療学会はこれらの細胞をいくつかのタイプの基準下記に基づいて定義する:機能的基準:培養および基質例えば、培養プラスチックなどにおける成長同一性基準:CD45およびCD34の発現がないこと、ならびに、CD73、CD29およびCD44の発現骨形成性の軟骨細胞系譜および脂肪系譜における分化能。最初の段階では、MSC細胞が骨髄から単離された。続いて、これらの細胞が、多くの組織例えば、脂肪組織、末梢血、肝臓、肺、筋肉、胎盤、羊水または臍帯血などから部分精製された。MSCが、組織修復骨修復を含む、免疫調節、血管形成応答の制御、および、腫瘍の様々な現象に関与する。これらの特徴は、MSCを、筋骨格領域における毒物学研究のための、また、新しい治療経路を種々の分野整形外科、血管疾患、炎症性疾患、ガンおよび遺伝子移入において発見するための不可欠な細胞ツールにする。しかしながら、ヒト組織からの幹細胞の単離および作製には、下記のような多くの制限がある:ヒト組織サンプルの入手性組織のそれぞれのために適合化されなければならない単離条件および作製条件限定された成長能表現型の不安定性個体間の変動性ヒト多能性幹細胞の存在は、正常なヒト細胞を何ら制限なく入手するという可能性をもたらす。2つのタイプの多能性細胞、すなわち、胚性幹細胞hESおよび誘導幹細胞iPSが存在する。多能性細胞が持つ本質的特徴は、制限を何ら伴わない自己再生の能力、および、全生物体を構成するすべての細胞タイプへの分化の可能性である。ヒト胚性幹細胞hESを使用することの、J.Thompsonの研究Thompson他、1998以後の可能性により、非常に多くの可能性が広がっており、この場合、それらのいくつかが臨床的意味合いを有し得る。制限を何ら伴わない自己再生の能力、および、成体生物を構成するすべての細胞タイプへの分化の能力である両方の本質的特徴は、これらの細胞を極めて有用なツールにしている。実験的には、ヒト胚性幹細胞は、多くのタイプの細胞心臓細胞、平滑筋細胞、神経細胞、ケラチノサイト、造血細胞、インスリン産生細胞の分化手法および単離の開発を可能にしている。Aヒト胚性幹細胞hESに由来するMSCに共通する特徴を有するMSCタイプの細胞を単離および作製するための手順の説明。細胞が未分化のhES細胞から作製される。作製条件は下記の通りである。それらの形態学的特徴によって特定され得る未分化細胞の塊が、これらの細胞を作製するための細胞材料の根幹である。1hES細胞の形態学によって認識される塊の機械的移植a.hES細胞ディッシュをEB培地表1を参照のことに変える;b.ニードルで筋をつけ、その後、凝集物を剥がす。29Gのニードルが1mLのシリンジに取り付けられる。形態学的分化の兆候を何ら有しないコロニーを選択する。数10個のコロニーがそれにより単離される。これらのコロニーは、それらの生存性を評価するためにトリパンブルーの存在下で計数される;c.ペレットを押しつぶすことなく、ペレットを15mLのチューブにおいて形成するために、900rpmで1分間遠心分離する;d.ペレットを1mLのEB培地に取り出す。細胞凝集物を部分的に解離させるために吸い上げ、排出する。凝集物のサイズは数10個の細胞の程度でなければならない;e.トリパンブルー計数:凝集物の数および生存性を求める。2MSC細胞の選抜および増殖:f.特定の数の凝集物数十個の凝集物が、EB培地において、ゼラチン処理の培養ディッシュに播種される。50個~200個の凝集物が1つの25cm2フラスコにつき播種される;g.最初の交換が48時間後に行われ、その後、2日~3日毎に行われる。2つの培養条件が試験される。第1の条件のもとでは、増殖因子の供給源がウシ胎児血清に限定されるEB培地。第2の条件については、FGF210ng/mlおよび1mmのアスコルビン酸2-リン酸がウシ胎児血清に加えられる。この培地はEBMODと呼ばれる。h.4日~5日の後、細胞が凝集物から現れ、基質に結合し、分裂を開始する。i.10日目~15日目の間で、細胞が、EDTAと組み合わされるトリプシンの溶液を使用することによって移植される。j.遠心分離による培養培地での洗浄および計数の後、細胞が、1cm2あたり2,000個の細胞から10,000個の細胞に及ぶ密度でゼラチン処理の支持体に播種される。k.最初の移植が5日目~10日目の間で行われる。この手順の範囲内において、本発明者らは、EBと呼ばれた培地と、FGF2が10μg/mlの濃度で加えられ、かつ、アスコルビン酸2-リン酸AA2Pが1mMの濃度で加えられた培地EBModとの2つの培養培地を比較した。EB培地の組成が表1に示される。本研究のために、hES胚性幹細胞のWT4KCL-002,XYを使用した。このhES細胞株は、StephenMingerWolfsonCentreforAge-RelatedDiseases,King’sCollegeLondonによって単離された。この細胞株は、UKStemCellBankUKStemCellBank、NationalInstituteforBiologicalStandardsandControlに由来する。類似する結果が、SA01胚性幹細胞を用いて得られる。この手順はまた、病理学的モデルを表す変異を有する胚性幹細胞に対して適用可能である。Bヒト胚性幹細胞hESに由来する多能性間質細胞MSCの特徴をともに有するMSCタイプの分化した細胞の作製。培地の2つの条件を、前記で記載される手順に従って得られる細胞の作製および特徴づけに関して分析した。この場合、MSCタイプの分化した細胞はWT4ヒト胚性幹細胞に由来した。結果が2つの下記の表に示される。両方の培地条件のもとでは、両方の培養条件のもとで増えることができる接着性細胞を得ることが可能である。FGFおよびアスコルビン酸2-リン酸の非存在下においては、単離された細胞の数がはるかにより少ない。これらの細胞は、数回の細胞分裂の後、老化し、これらの条件のもとで効率的に増幅することができない。得られた細胞の量は、FGFおよびアスコルビン酸2-リン酸を含有する培地の存在下では実質的により多くなっている。後者の条件のもとでは、細胞数が、対数での倍数で数単位、増大し得る。この変更の導入はまた、MSCタイプの細胞のための作製時間の短縮化を可能にする。これらの条件のもとにおいて、ヒト胚性幹細胞に由来する約100個の凝集物から、著しい複製能約30回を超える細胞分裂を有する108個の細胞を23日以内の培養で作製することが可能である。これらの変更は、老化段階に入るこれらの細胞の能力を変化させておらず、このことは、上記により作製された細胞の形質転換されていない性質を示していることに留意しなければならない。これらの条件のもとでは、MSC細胞を、すべてのヒトの正常な胚性幹細胞を用いて作製すること、または、変異を有するMSC細胞を作製することが可能であることに留意しなければならない。この方法は、スタイネルト病に罹患した胚からの胚性幹細胞について首尾よく適用された。これらの条件は、ヒト胚性幹細胞に由来するMSCタイプの分化した細胞を作製するための方法のロバストネスを増大させるという可能性をもたらす。Cヒト胚性幹細胞hESに由来するMSCタイプの分化した細胞のフローサイトメトリーによる特徴づけ。ヒト胚性幹細胞hESから本作製方法によって作製される分化した細胞の特徴づけをフローサイトメトリーによって行った。この一般的な技術は、細胞の表面に存在する分子の定性的および定量的な分析を、特異的な抗体を使用することによって可能にする。この工程のために、全能性状態に関連する膜マーカーに対する抗体、および、MSC細胞のマーカーに対する抗体を使用した。上記により作製された細胞は、全能性状態に関連する抗原TRA1-60をその表面に発現しない。類似する結果が、全能性の他のマーカー例えば、SSEA3およびTRA1-80などに対する抗体に関して得られる。したがって、これらは、胚性幹細胞のその特異的な多能性を失っている細胞である。一方で、これらの細胞は、MSC細胞に関連するマーカー例えば、CD73、CD29、CD44、CD166およびCD105などを発現する。得られた結果が表4に示される。本作製方法によって作製される細胞は、CD73、CD29、CD44、CD166およびCD105のマーカーについて95超にまで均質である。これらの結果はFGF2およびAA2Pの存在によって変化しない。上記により作製された細胞は、それらの表面マーカーについてMSC細胞の主要な特徴を有する。D培養培地におけるFGF2およびアスコルビン酸2-リン酸の組み合わされた存在は、本発明の方法によって作製される細胞における成長能およびSSEA4の発現を増大させる。本発明の方法に従う単離された細胞の成長能に対するFGF2およびアスコルビン酸2-リン酸の役割を、ヒト胚性幹細胞SA01に由来する細胞に関して分析した。細胞が、20ウシ胎児血清の存在下コントロール条件、ならびに、FGF2およびアスコルビン酸2-リン酸AA2Pの存在下または非存在下で培養される。老化に入る前に得られた細胞の最大数を表す結果が下記の表5に示される。FGF2およびAA2Pの組み合わされた存在は、蓄積した最大細胞量を対数での倍数で約12ほど増大させるという可能性をもたらす。FGF2およびアスコルビン酸は個々には、細胞量の増大に対する影響ははるかにより小さく、FGF2については対数での倍数で5を少し下回っており、アスコルビン酸2-リン酸については対数での倍数で6を少し下回っている。FGF2およびアスコルビン酸の影響は、蓄積した細胞の最大細胞量に対して明らかに相乗的である。SSEA4膜マーカーが、多能性細胞、および、異なる組織例えば、骨髄、脂肪組織または神経組織などから得られるある数の前駆体細胞において発現される。これらの異なる条件のもとで培養される細胞におけるSSEA4の存在を、SSEA4に対する特異的な抗体を使用することによってフローサイトメトリーにより分析した。結果が下記の表6に示される。FGF2およびアスコルビン酸2-リン酸のどちらも、SSEA4の発現を著しく増大させない。一方で、両方の分子の組み合わせはSSEA4の量を3.7倍増大させる。この蛍光レベルは、ヒト多能性細胞に関して認められる蛍光レベルに匹敵する。FGF2およびアスコルビン酸2-リン酸の組み合わされた存在は、蓄積した細胞の最大数およびSSEA4の発現レベルを複合様式で増大させた。E本発明の方法に従って作製されるMSCタイプの細胞は正常な核型を有する。MSC細胞の核型が中期での染色体に関して分析され、その核型は、FGF2およびAA2Pの存在下および非存在下において、何ら検出される異常を伴わないことが判明した。F本発明の方法に従って作製されるMSCタイプの細胞は骨形成能を有する。骨形成性の培地においては、本発明の方法に従って作製されるMSCタイプの細胞は骨組織の機能を発現することができる。デキサメタゾン、B-グリセロリン酸を含む培地における14日間の培養の後、本発明の方法に従って作製されるMSCタイプの細胞はアルカリホスファターゼを発現し、石灰化結節を形成する。石灰化結節が特異的な組織化学的技術フォンコッサ染色によって明らかにされる。Gヒト胚性幹細胞hESに由来するMSCタイプの分化した細胞を凍結すること。上記により作製された細胞は、細胞を凍結することによって保存することができる。凍結用培地は下記の通りである:90の血清および10のDMSO。FGF2およびAA2Pの存在下における培地で作製された細胞の凍結を、7代目の継代培養で、かつ、106個/mlの濃度で実施した。両方の条件のもとで作製されるMSC細胞は凍結によって非常に効率的に保存される。凍結はMSC細胞の成長特徴を変化させない。これらの凍結技術は、非常に多数の細胞を、それらの生物学的特徴を変化させることなく貯蔵するという可能性をもたらす。H結論hES細胞に由来する分化したMSC細胞を増幅するための培地におけるFGF2およびアスコルビン酸2-リン酸の存在は下記の可能性をもたらす:分化した細胞を胚性幹細胞から作製するための技術のロバストネスを増大させることこれらの細胞の作製を促進させること作製された細胞の最大数を増大させること増殖能を増大させること正常な核型を有する細胞を得ることSSEA4を全能性細胞および前駆体細胞のマーカーとして特異的に発現すること。FGF2およびアスコルビン酸2-リン酸の存在下における培地で作製される細胞は、MSC細胞に関連する下記のような特徴を有する:基質への接着大きいが、有限の成長能何ら検出可能な異常を伴わない核型凍結による保存CD73、CD29、CD44、CD166、CD105のマーカーについての発現の均質性骨形成能実施例2.アスコルビン酸と連携させられるFGF2は、MSC細胞の特徴を有するヒト多能性細胞iPSに由来するMSCタイプの分化した細胞を作製するための技術のロバストネスおよび効率を改善する。AMSCの特徴と共通する特徴を有する細胞を誘導多能性ヒト細胞IPSから単離および作製するための手順の説明。iPS4603Cl5およびiPS4603PClAのiPS細胞を、下記の遺伝子を導入する山中の手法を使用することによってヒト初代線維芽細胞から作製した:Oct4、Sox2、cMycおよびKlf4。遺伝子移入を、モロニータイプのレトロウイルスを用いて行った。ウイルス形質導入を、これら4つの遺伝子のそれぞれを有する4つのウイルスによる同時感染によって行った。バルプロ酸による処理は初期化の効率における増大を可能にした。形質導入後、細胞を、ヒト多能性細胞の出現を促進させるカルシウム培地において、マウス胚性線維芽細胞からなる栄養組織の存在下で培養する。多能性ヒト細胞を成長させるための特異的培地の必須構成成分はFGF2である。培地を24時間毎に変える。2週間~3週間の後、多能性細胞の特徴を有する最初のコロニーが視認される。その後、これらのコロニーを単離し、装置によって移植する。その後、2つの集団が形成される:モノクローナルな集団iPSiPS4603Cl5およびポリクローナルな集団iPS4603PClA。上記により単離された細胞は下記の特徴を有する:初期化のために使用された形質導入外因性遺伝子の消滅全能性マーカーSSEA4およびTRA-1-81、TRA1-60の発現正常な核型多能性状態をFGF2の存在下での培地において維持しながらの成長能胚の本体外胚葉、内胚葉、中胚葉を形成した後での分化能。これらの細胞は誘導多能性細胞iPS細胞の特徴を有する。したがって、これらの細胞を、MSCタイプの細胞を作製するために使用した。作製条件は下記の通りである。それらの形態学的特徴によって特定され得る未分化細胞の塊が、これらの細胞を作製するための細胞材料の根幹である。1hES細胞の形態学によって認識される塊の機械的移植l.iPS細胞ディッシュをEB培地表1を参照のことに変える;m.ニードルで筋をつけ、その後、凝集物を剥がす。29Gのニードルが1mLのシリンジに取り付けられる。形態学的分化の兆候を何ら有しないコロニーを選択する。数10個のコロニーをそれにより単離する。これらのコロニーは、それらの生存性を評価するためにトリパンブルーの存在下で計数される。c.ペレットを押しつぶすことなく、ペレットを15mLのチューブにおいて形成するために、900rpmで1分間遠心分離する;o.ペレットを1mLのEB培地に取り出す。細胞の凝集物を部分的に解離させるために吸い上げ、排出する。凝集物のサイズは数10個の細胞の程度でなければならない。p.トリパンブルー計数:凝集物の数および生存性を求める。2MSCタイプの細胞の選抜および増殖q.特定の数の凝集物数十個の凝集物が、EB培地において、ゼラチン処理の培養ディッシュに播種される。50個~200個の凝集物が1つの25cm2フラスコにつき播種される。r.最初の交換が48時間後に行われ、その後、2日~3日毎に行われる。2つの培養条件が試験される。第1の条件のもとでは、増殖因子の供給源がウシ胎児血清に限定されるEB培地。第2の条件については、FGF210ng/mlおよび1mMのアスコルビン酸2-リン酸がウシ胎児血清に加えられる。この培地はEBMODと呼ばれる。s.4日~5日の後、細胞が凝集物から現れ、基質に結合し、分裂を開始する。t.10日目~15日目の間で、細胞が、EDTAと組み合わされるトリプシンの溶液を使用することによって移植される。u.遠心分離による培養培地での洗浄および計数の後、細胞が、1cm2あたり2,000個の細胞から10,000個の細胞に及ぶ密度でゼラチン処理の支持体に播種される。v.最初の移植が5日目~10日目の間で行われる。この手順の範囲内において、本発明者らは、EBと呼ばれた培地と、FGF2が10μg/mlの濃度で加えられ、かつ、アスコルビン酸2-リン酸が1mMの濃度で加えられた培地EBModとの2つの培養培地を比較する。EB培地の組成が表1に示される。B多能性間質細胞MSCの特徴を示す分化した細胞の、誘導多能性ヒト細胞iPSからの作製。両方の培地条件を、実施例1で記載される手順と同一である手順に従うことによって得られる細胞の作製および特徴づけに関して分析した。10日目以降において、認められる細胞の数は、FGFおよびアスコルビン酸2-リン酸の存在下での培地の方が大きい。この傾向が培養期間中において確認される。得られた結果が下記の表に示される。両方の培地条件のもとでは、両方の培養条件のもとで増えることができる接着性細胞を得ることが可能である。しかしながら、得られた細胞の量は、FGFおよびアスコルビン酸2-リン酸を含有する培地の存在下での方が多いことに留意しなければならない。後者の条件のもとでは、細胞数が、対数での倍数で数単位、増大し得る。この変更の導入はまた、MSCタイプの細胞を作製するための時間の短縮化を可能にする。後者の条件のもとにおいて、ヒト胚性幹細胞に由来する約100個の凝集物から、著しい複製能約30回を超える細胞分裂を有する108個の細胞を22日以内の培養で作製することが可能である。FGF2およびアスコルビン酸2-リン酸の非存在下では、単離された細胞の数がはるかにより少ない。3週間の培養の後では、得られた細胞の数は1/20である。50日間の培養の後では、差が105である。約20回の細胞分裂の後において、これらの条件のもとで作製された細胞は老化する。iPS細胞のクローンを用いて得られるこれらの結果は、iPS細胞のポリクローナル集団と確認される。ポリクローナル集団を持ち手得られる結果は類似している。C誘導多能性ヒト細胞IPSに由来するMSCタイプの細胞の特徴をともに有する分化した細胞を凍結すること。上記により作製された細胞は凍結によって保存することができる。凍結用培地は下記の通りである:90の血清および10のDMSO。EBMod培地で作製された細胞の凍結を、7代目の継代培養で、かつ、106個/mlの濃度で実施した。生存性がトリパンブルーによる排除試験によって測定される。両方の条件のもとで作製されたMSC細胞は凍結によって非常に効率的に保存される。凍結はMSC細胞の成長特徴を変化させない。これらの凍結技術は、非常に多数の細胞を、それらの生物学的特徴を変化させることなく貯蔵するという可能性をもたらす。D本発明の方法に従って作製されるMSC細胞は正常な核型を有する。MSC細胞の核型が中期での染色体に関して分析され、その核型は、FGF2およびAA2Pの存在下および非存在下において、何ら検出される異常を伴わないことが判明した。E誘導多能性ヒト細胞iPSから得られる多能性間質細胞MSCの特徴をともに有する分化した細胞のフローサイトメトリーによる特徴づけ。ヒト胚性幹細胞hESから本作製方法によって作製される分化した細胞の特徴づけをフローサイトメトリーによって行った。この最新の技術は、細胞の表面に存在する分子の定性的および定量的な分析を、特異的な抗体を使用することによって可能にする。この工程のために、全能性状態に関連する膜のマーカーに対する抗体、および、MSC細胞のマーカーに対する抗体を使用した。上記により作製された細胞は、全能性状態に関連する抗原TRA1-60をその表面に発現しない。その他の全能性マーカーSSEA3およびTRA1-80などは類似する結果を与える。したがって、これらは、胚性幹細胞のその特異的な多能性を失っている細胞である。一方で、これらの細胞は、MSC細胞に関連するマーカー例えば、CD73、CD29、CD44、CD166およびCD105などを発現する。得られた結果が表10に示される。本作製方法によって作製された細胞は、CD73、CD29、CD44、CD166およびCD105のマーカーについて93超にまで均質である。上記により作製された細胞は、それらの表面マーカーについてMSC細胞の主要な特徴を有する。同一の結果が、ポリクローナルなiPS細胞の集団に関して得られる。上記により記載された手順は、Thompsonによって記載される技術により得られるiPS細胞を使用することによって、類似する結果を伴うが、分化したMSC細胞を得るという可能性をもたらす。したがって、記載される方法の効率は初期化技術に依存しない。F培養培地におけるFGF2およびアスコルビン酸2-リン酸の組み合わされた存在は、本発明の方法によって作製される細胞による成長能およびSSEA4の発現を増大させる。SSEA4膜マーカーが、多能性細胞、および、異なる組織例えば、骨髄、脂肪組織または神経組織などから得られるある数の前駆体細胞において発現される。これらの異なる条件のもとで培養される細胞におけるSSEA4の存在を、SSEA4に対する特異的な抗体を使用することによってフローサイトメトリーにより分析した。ヒト線維芽細胞から誘導された多能性細胞に由来する細胞iPSiPS4603Cl5を用いて得られた結果が下記の表に示される:FGF2およびアスコルビン酸2-リン酸の組み合わせの存在は、SSEA4を発現する細胞の数、および、平均蛍光強度を増大させる。FGF2およびアスコルビン酸2-リン酸の組み合わされた存在は、蓄積した細胞の最大数およびSSEA4の発現レベルを一緒に増大させる。G本発明の方法に従って作製されるMSCタイプの細胞は骨形成能を有する。骨形成性の培地においては、本発明の方法に従って作製されるMSCタイプの細胞は骨組織の機能を発現することができる。デキサメタゾン、B-グリセロリン酸を含む培地における14日間の培養の後、本発明の方法に従って作製されるMSCタイプの細胞はアルカリホスファターゼを発現し、石灰化結節を形成する。石灰化結節が特異的な組織化学的技術フォンコッサ染色によって明らかにされる。H結論細胞を増幅するための培地におけるFGF2およびアスコルビン酸2-リン酸の存在は下記の可能性をもたらす:分化した細胞を誘導多能性細胞iPSから作製するための技術のロバストネスを増大させることこれらの細胞の作製を促進させること作製された細胞の数を増大させること増殖能を、それらの老化能を変化させることなく増大させること正常な核型を有する細胞を得ることSSEA4全能性細胞および前駆体細胞のマーカーの特異的な発現。FGF2およびアスコルビン酸2-リン酸の存在下における培地で作製される細胞は、MSC細胞に関連する下記のような特徴を有する:基質への接着大きいが、有限の成長能凍結による保存CD73、CD29、CD44およびCD166のマーカーについての発現の均質性骨形成能実施例3:ヒト胚性幹細胞hESに由来するMSCタイプの分化した細胞、すなわち、ハイスループットスクリーニング技術のための筋肉組織の予測可能な毒性学のためのツール。Aヒト筋肉前駆体細胞MPC:予測可能な毒性学のためのツール。ヒト筋肉前駆体細胞MPCは筋肉毒性の良好な指標物である。実際、MPCの細胞成長が成長培地におけるスタチンの存在によって阻害される。この阻害は用量依存的である。メバロン酸の存在はこの阻害を完全に生じさせることができる。したがって、この阻害が、HMGCoAレダクターゼの阻害を介して、すなわち、メバロン酸コレステロールの合成における前駆体の産生に関わる酵素の阻害を介して達成される。この細胞試験システムにより、ヒトの臨床診療において使用されている各種スタチンの毒性が試験されている。得られた結果が特許において示される:PCT国際公開第2004/0055174号における培養組成物、培養方法およびそれらの使用。1μMの濃度において、上記スタチンのすべてが筋肉細胞については毒性を有する。この毒性はまた、スタチンのタイプに依存する。セリビスタチンcerivistatinが、試験された濃度のすべてにおいてより大きい毒性を有する。これらの結果は、その著しい筋肉毒性のために市場から撤退されたセリビスタチンの著しい毒性を示している臨床観察結果との良好な相間関係にある。したがって、MPCを使用するこの細胞試験バイオアッセイは、筋肉の毒性学のための予測可能な価値を有する。しかしながら、MPC細胞の生物学的特徴に関連づけられる、このタイプのバイオアッセイに対する固有的な制限が存在する。MPC細胞は、バッチ毎の変動、限定的な複製能、および、継代培養期間中の表現型の不安定性を有する、筋肉組織から単離されたヒト初代細胞である。B予測可能な毒性学のためのツールとしての、ヒト胚性幹細胞に由来するMSCタイプの分化した細胞。したがって、目標が、MPC細胞を、再現性のある方法で大量に作製することができ、かつ、HMGCoAレダクターゼの阻害剤に対する感受性を有する細胞により置き換えることである。多能性ヒト細胞hESおよびiPSに由来するMSCタイプの分化した細胞を、数に関して何ら制限されることなく作製することができる実施例1を参照のこと。表2は、これらの細胞が、MPC細胞に関して認められる対スタチン感受性に近い対スタチン感受性を有することを示している。MSCSAMU43と称される、hES細胞SA01に由来するMSCタイプの分化した細胞が、メバロン酸の存在下および非存在下、MevolinロボスタチンLovostatinおよびSimvastatinシンバスタチンの増大する用量とともに培養される。7日間の培養の後、細胞が固定され、染色され、その後、画像分析によって計数される。得られた結果が下記の表に示される:MSCSAMU43細胞は用量依存的様式でスタチンに対して感受性である。MPCの場合と同様に、メバロン酸の存在により、スタチンの毒性が防止される。したがって、認められた毒性は、メバロン酸コレステロールの前駆体の合成の阻害に起因する。したがって、胚性幹細胞に由来するMSCタイプの分化した細胞を、メバロン酸合成の阻害剤の細胞毒性を評価するために使用することが可能である。したがって、胚性幹細胞に由来するMSCタイプのこれらの分化した細胞は、このタイプの細胞試験のための無限の供給源である。C胚性幹細胞に由来するMSCタイプの分化した細胞:スクリーニングのためのツール。ハイスループットスクリーニング技術の開発では、細胞を、生物学的機能を変化させることなくマルチウエルにおいて培養し、かつ、自動化可能な読み取りシステムを有するという可能性が要求される。ATP量決定dosageにより、細胞数を自動測定することが可能であるにちがいない。この試験では、光放射が細胞のATPの量に比例している。下記の実験では、ATPの量と、細胞数との関係を確認することができた。増大する細胞数が、画像分析によるか、または、ATPの量決定のどちらによってでも分析された。細胞が96ウエルのマルチウエルにおいて培養された。102個の細胞~104個の細胞が画像分析によって、および、ATP量の量決定によって分析された。良好な直線性が、画像分析によって求められる細胞数と、発光による検出ATPの量との間に存在し、0.9831という優れたR2を有する。したがって、ATP量による細胞数の決定が可能である。この取り組みは、細胞数の自動化された読み取りを可能にする。同様の結果が、ミトコンドリア活性の追跡を使用することによって得られる。hES細胞に由来するMSCタイプの分化した細胞MSCWTを、Bravoタイプの分配ロボットを使用することによって、ウエルあたり2,000個の細胞の濃度で、事前にゼラチン処理された384マルチウエルに播種した。細胞の量を、20のウシ胎児血清を含有する培養培地においてシンバスタチンの存在下または非存在下での72時間の培養の後、CellTiterGlowによって評価した。得られた結果が表4に示される。シンバスタチンは2μMで分化細胞に対して毒性であり、DMSO/スタチン比が2を超える。変動係数は非常に大きくなく、2.9~15.9の間である。毒性はシンバスタチンに限定されるのではなく、2つの他のスタチンに関してもまた認められる。これらの場合のすべてにおいて、この毒性がメバロン酸によってなくなる。このことは、この阻害が、HMGCoAレダクターゼメバロン酸の合成に関わる酵素を阻害するように達成されることを示している。この実験については、hES細胞SA01に由来する分化したMSCSA01細胞が、分配ロボットを使用することによって384ウエルプレートで試験され、細胞生存性が、72時間の培養の後、CellTiterGlowによって測定された。得られた結果が表5に示され、何ら処理を伴わない得られた結果の百分率として表される。これら3つの試験されたスタチンはこれらの細胞に対して毒性を有しており、また、これらの場合のすべてにおいて、メバロン酸の存在により、この毒性がなくなる。フルバスタチンは毒性がシンバスタチンよりも大きいこと、および、後者は毒性がロボスタチンよりも大きいことにもまた留意しなければならない。これらの結果は、MPCを用いて得られた結果と非常に類似している。hES細胞に由来するMSC細胞を実験的に立証するために、本発明者らは小分子のバンクPrestwickバンクをスクリーニングした。このバンクは、ヒトの臨床診療において使用される製造物の大多数を表す1,200超の分子からなる。物質が2.5μMの濃度で使用される。細胞が、2mMの濃度でのメバロン酸の存在下または非存在下、事前にゼラチン処理された96ウエルまたは384ウエルのマルチプレートに播種される。24時間後、バンクの化合物がVelocityタイプのロボットによって分配される。ウエルあたりのATPの量が、バンクからの化合物を加えた72時間後、CellTiterGlowから求められる。スクリーニング基準が下記の通りであった:メバロン酸の非存在下における35超の毒性メバロン酸の存在下における20未満の毒性。3つの異なるスクリーニング試験が行われた。第1のスクリーニングについては、MSC細胞がhESヒト細胞SA01に由来した。試験が、20のウシ胎児血清を含有する培養培地の存在下、96ウエルの28枚のマルチウエルにおいて行われた。Z因子の平均が0.47であった。これらの条件のもとでは、試験された1,200超に関して11個の分子を単離することができたこれらには、バンクに存在する3つのスタチンロボスタチン、シンバスタチン、フルバスタチンが含まれる。第2のスクリーニングが、ヒト胚性幹細胞の別の系統に由来するMSC細胞VUB01系統を使用することによって行われた。この試験では、細胞が384ウエルのマルチプレートに播種された。スクリーニングの条件は前回のスクリーニング条件のようにされた。平均Z’因子が0.55であった。この様式で選び出された分子の数は15個であったこれらには、バンクに存在する3つのスタチンが含まれる。第3のスクリーニングが、第1のスクリーニングの細胞と同じ細胞により384ウエルのプレートにおいて行われた。この場合、Z’因子が0.59であった。この様式で選び出された分子の数は3個であったこれらには、バンクに含有される3つのスタチンが含まれる。これら3つの独立したスクリーニングにおける得られた結果が例示され、下記の表にまとめられる。本発明者らがそれぞれのスクリーニングにおいて再び見出した分子はもっぱら、バンクに含有される3つのスタチンであった。したがって、ヒト胚性幹細胞に由来するMSC細胞を使用するこのバイオアッセイの条件は、メバロン酸の合成を阻害する分子を高感度かつロバストな様式でスクリーニングするという可能性をもたらすという結論を引き出すことができる。胚性幹細胞に由来するMSC細胞はハイスループットスクリーニングのための優れたツールである。これらの性質が、hES細胞に由来するMSCのすべてに関して認められる。D結論ヒト胚性幹細胞に由来するMSCタイプの分化した細胞は、MPC細胞と同じタイプの対スタチン感受性を有しており、かつ、筋肉組織について毒性を有する製造物をスクリーニングするための、また、メバロン酸合成の阻害剤のためのハイスループット技術のために好適である、ロバストで、高感度で、かつ、特異的なツールである。実施例4:ハイスループットスクリーニング技術のための筋肉組織の予測可能な毒性学のためのツールとしての、ヒト誘導多能性細胞iPSに由来するMSCタイプの分化した細胞。胚性幹細胞の本質的特徴何ら限定されない自己再生、および、生物体全体を構成する細胞タイプのすべてへの分化能の可能性をともに有する誘導多能性細胞iPSは、作製することがより容易であり、かつ、規制上の問題をあまり引き起こさない。これらの性質は、これらの細胞およびそれらの誘導体をハイスループットスクリーニング技術のための良好な候補にする。Aヒト誘導多能性幹細胞に由来する分化したMSC細胞:ハイスループットスクリーニングにおける予測可能な毒性学のためのツール。ハイスループットスクリーニング技術の開発では、細胞を、生物学的機能を変化させることなくマルチウエルにおいて培養し、かつ、自動化可能な読み取りシステムを有するという可能性が要求される。ATPの量決定により、細胞数を自動測定することができるにちがいない。この試験では、光放射が細胞のATPの量に比例している。予備的実験は、ATPの量と、細胞数との関係を確認するという可能性をもたらした。このタイプの試験では、ATPの測定された量が細胞の数を表す。ヒト誘導多能性幹細胞iPSに由来する分化したMSC細胞が、384ウエルの中にウエルあたり2,000個の細胞の密度で播種され、2μMの濃度でのシンバスタチンの存在下および非存在下において72時間培養された。異なる下記の培養条件が試験された:培養培地およびアスコルビン酸2-リン酸培養培地および1のウシ胎児血清培養培地および10のウシ胎児血清培養培地および20のウシ胎児血清。本実験の目標が、試験のロバストネスを調べること、および、この試験を行うための最適な条件を明確化することの両方であった。数字での結果が下記の表に示される:試験された条件のすべてのもとにおいて、シンバスタチンはこれらの細胞に対する大きい毒性影響を有する60を超える。この毒性は、筋肉前駆体細胞MPCに関して認められる毒性と非常に類似している。実験条件のすべてのもとにおいて、サイズ効果の統計学的指標であるZ’因子が、これらの試験がハイスループットスクリーニングのために使用され得ることを示す0.60を超えていることにもまた留意しなければならない。一方で、このタイプの試験を、動物血清が何ら存在しない合成培地において実施することが可能である。この場合、認められた毒性が63であり、Z’因子が0.76である。この試験のための最適な培養条件が、1のウシ胎児血清の存在下での培地である。これらの条件のもとにおいて、低下した細胞数が93あり、Z’因子が0.78である。iPS細胞に由来するMSC細胞を実験的に立証するために、本発明者らは小分子のバンクPrestwickバンクをスクリーニングした。このバンクは、ヒトの臨床診療において使用される製造物の大多数を表す1,200超の分子からなる。物質が2.5μMの濃度で使用される。手順の概略的例示が付録1に示される。細胞が、2mMの濃度でのメバロン酸の存在下および非存在下、事前にゼラチン処理された96ウエルまたは384ウエルのマルチプレートに播種される。24時間後、バンクの化合物がVelocityタイプのロボットによって分配される。ウエルあたりのATPの量が、バンクの化合物を加えた72時間後、CellTiterGlow試験によって求められる。スクリーニング基準が下記の通りであった:メバロン酸の非存在下における80超の毒性メバロン酸の存在下における50未満の毒性スクリーニング試験が、iPS細胞に由来するMSC細胞を使用することによって行われた。2,000個の細胞が、メバロン酸の存在下および非存在下、384ウエルの16枚のプレートに播種された。24時間後、細胞はPrestwickバンクからの分子と接触させられた。測定が72時間の培養の後で行われた。この試験のZ’因子は0.70を超えている。これらの基準により、本発明者らは、バンクに含有される3つだけのスタチンである3つの分子を特定するだけである。これらのデータは、iPS細胞に由来するMSC細胞をハイスループットスクリーニングのために使用することが可能であることを示す。後者の細胞は、胚性幹細胞に由来するMSC細胞と非常に類似する機能的特徴を有する。B結論ヒト誘導多能性細胞に由来する分化したMSC細胞は、MPC細胞と同じタイプの対スタチン感受性を有しており、かつ、筋肉組織について毒性を有する製造物のためのハイスループットスクリーニング技術のために好適な細胞ツールである。タイプの細胞により、ハイスループットスクリーニングのために開発された細胞試験はロバストであり、かつ、高感度である。この試験を合成および定義された培地の条件のもとで行うことが可能であることを付け加えなければならない。実施例5.ハイスループットスクリーニングおよびメバロン酸の代謝:筋萎縮およびガンのための適用。A序論この一連の試験において、目標は、HMGCoAレダクターゼの阻害剤の毒性影響を改変し得る分子を単離することである。したがって、この様式において、HMGCoAレダクターゼの阻害剤の毒性影響を軽減することができるか、または、特異的に高めることができることに基づいて分子を選び出すことが可能である。毒性影響を軽減する分子は、筋肉組織に対するHMGCoAレダクターゼの阻害剤の悪影響を軽減するために、HMGCoAレダクターゼの阻害剤に関連し得る。一方で、これらの分子は、より広範囲の適用を筋萎縮の保護において有し得る。実際、筋萎縮の大多数においては、アトリゴンatrigonタンパク質が増大し、これは筋萎縮の起源に関係ないことが示された。さらに、HMGCoAレダクターゼの阻害剤による細胞の処理はアトロギンの合成を増大させる。したがって、HMGCoAレダクターゼの阻害剤によって処理される細胞は筋萎縮のインビトロ細胞モデルを形成し得ると考えることは無理のないことである。筋萎縮は、多くの病理神経筋疾患、ガンまたはHIVに伴う極めて一般的な病理である。後者の病理において、萎縮は不良な予後因子である。したがって、筋萎縮を防止すること、または、筋萎縮を軽減させることが、重要な治療目標である。毒性影響を高める分子は複数の理由のために対象となっている。これらの分子を理解することは、潜在的な毒性影響を防止するために、HMGCoAレダクターゼの阻害剤とそれらの治療的併用を避けるという可能性をもたらし得る。一方で、HMGCoAレダクターゼの阻害剤が、抗腫瘍処置におけるそれらの治療可能性を増大させるための抗ガン分子との併用で使用される。HMGCoAレダクターゼの阻害剤の効果を高める分子を明確化することは、腫瘍疾患を処置するための治療的併用を明確化するための合理的な根拠を提案するという可能性をもたらす。BHMGCOAレダクターゼの阻害剤で処理される多能性細胞由来の分化したMSC細胞を用いて小分子のバンクをスクリーニングするための原理多能性細胞に由来するMSC細胞が、HMGCoAレダクターゼの阻害剤の存在下で播種され、小分子のバンクにより処理される。この実験では、使用されるHMGCoAレダクターゼの阻害剤は、2μMの濃度でのシンバスタチンであった。72時間の培養の後、細胞数が、CellTiterGlow技術によってそれぞれのウエルについて求められる。本技術の実現可能性を実証するために、小分子のPrestwickバンクが選択されたこのバンクは1,200超の化合物を含有しており、それらについての有効成分の大多数が、実施例2の場合のように、ヒトの臨床診療において使用される。作業プロセスが付録2に概略化される。Cシンバスタチンにより処理されるヒト多能性細胞由来の分化したMSC細胞に対するスクリーニングの結果スクリーニング条件は下記の通りであった:384ウエルの中でウエルあたり2,000個の細胞D1Prestwickバンクからの化合物による処理D1シンバスタチンによる処理D4CellTiterGlowによる結果の読み取りこのスクリーニングにより、2つのタイプの化合物を特定することが可能である。第1のタイプは保護的役割を有し、MSC細胞について、HMGCoAレダクターゼの阻害剤の毒性を制限する。第2のタイプはスタチンの毒性を悪化させる。閾値の選択が、サンプルの平均および標準偏差を計算することによって行われた。この方法論により、一連の保護的化合物と、シンバスタチンの毒性を悪化させる一連の化合物とが決定された。第1の化合物について、下記の結果が得られた。結果が表14に示される。11個の化合物が、2標準偏差で平均よりも大きい平均を有し、2個の化合物のみが、4標準偏差で平均よりも大きい平均を有する。上記により選択された化合物は、異なる薬物クラス抗高血圧薬、抗ヒスタミン薬、抗うつ薬または抗コリン作動薬に属する。したがって、この取り組みを使用することによって、スタチンの毒性影響における軽減を可能にする化合物を単離することが可能であった。上記により単離された分子の第1の適用の1つが、各種スタチンの悪影響を防止し、それにより、それらの臨床適応を拡大する。一方で、これらの分子は、保護的役割を筋萎縮において、すなわち、そのための治療的ツールが依然としてあまりにも縮小させられる非常に一般的な病理において有し得る。実際、メバロン酸合成の阻害剤により処理されるMSC細胞は、多くの根本的病理筋ジストロフィーまたは二次的病理筋肉減少症、ガン、HIV、加齢において認められる筋萎縮についての培養ディッシュにおけるモデルを表す。このタイプのスクリーニングは、筋萎縮を軽減するための薬物戦略を明確化することを可能にする。スタチンの影響を高める第2の一連の化合物について、下記の結果が得られた。結果が表15に示される。32個の化合物が、5標準偏差を超えたより小さい平均を有する。これら32個の化合物の中には、予想外にも、バンクに存在する3つのスタチンが見出される。実際、シンバスタチンの選択された濃度は準最適であり、そして、これらの条件のもとでは、バンクに存在するスタチンが検出されることが予想される。より精細な分析のために、その毒性がシンバスタチンの存在下で高まる化合物を単離することが可能である。実際、32個の化合物の中で、5個の化合物が、シンバスタチンの非存在下での毒性試験において明らかにされなかった。したがって、認められた毒性をスタチンの存在下で特異的に増大させる化合物を単離することが可能である。これらの分子の中には、抗腫瘍分子と、認識されている筋肉毒性を有する分子とが見出される。この試験により、スタチンに起因にする組織毒性を高める分子を予測することが可能である。この取り組みにより、スタチンの存在下における薬物相互作用に起因する毒性を防止することが可能である。したがって、実施されることになるこの簡便な機能的試験は、すべての新規な分子について、それらが臨床診療に移行する前に体系的に実施され得る。スクリーニング戦略は下記の通りである。最初のスクリーニングにより、スタチンにより処理される細胞の存在下で毒性を高める分子を単離することが可能になる。その後、逆スクリーニングが、スタチンの非存在下で毒性を有する分子を除くために、最初のスクリーニングから得られる上記により単離された分子に対して行われる。このようにして、スタチンの存在下における毒性の特異性が保証される。この戦略により、5個の選び出された分子の中で、3個が抗腫瘍分子であることは意義深いことである。C結論細胞源として、HMGCoaレダクターゼの阻害剤シンバスタチンにより処理される多能性細胞由来の分化したMSC細胞を使用する開発された細胞試験バイオアッセイは、シンバスタチンの毒性影響から守る分子、および、この影響を悪化させる分子を選び出すことを可能にする。第1の分子群は、HMGCoaレダクターゼの阻害剤の毒性影響を制限するための治療的適用、および、筋萎縮主要な病理を防止するための治療的適用を有し得る。第2の分子群は、望ましくない薬物相互作用を予測するための毒物学的適用、そして、腫瘍細胞および腫瘍幹細胞に対する細胞毒性効果を得るためにHMGCoaレダクターゼの阻害剤と併用され得る分子群を決定するための腫瘍処置における治療的適用を有し得る。"