"a1多孔質繊維性不織布マトリックス、及び2金属ケイ酸塩を含み、前記多孔質繊維性不織布マトリックス中に捕らえられている、少なくとも1つの濃縮剤の複数の粒子、を含む濃縮デバイスを提供すること、b少なくとも1つの標的細胞検体を含む試料を提供すること、c前記少なくとも1つの標的細胞検体の少なくとも一部が、前記濃縮デバイスに結合される又は捕捉されるように、前記濃縮デバイスを前記試料と接触させること、並びにd少なくとも1つの結合した標的細胞検体の存在を検出すること、を含む、濃縮プロセス。前記多孔質繊維性不織布マトリックスが湿式堆積プロセスによって形成されている、請求項1に記載のプロセス。前記多孔質繊維性不織布マトリックスが、少なくとも1つのフィブリル化繊維を含む、請求項1又は2に記載のプロセス。前記多孔質繊維性不織布マトリックスの前記繊維が、ポリマー繊維、無機繊維、及びこれらの組み合わせから選択される、請求項1~3のいずれか一項に記載のプロセス。前記ポリマー繊維が、ポリアミド、ポリオレフィン、ポリスルホン、及びこれらの組み合わせから選択される少なくとも1つのポリマーを含む、請求項4に記載のプロセス。前記無機繊維が、ガラス、セラミックス、及びこれらの組み合わせから選択される少なくとも1つの無機材料を含む、請求項4又は5に記載のプロセス。前記多孔質繊維性不織布マトリックスが、少なくとも1つのポリマーバインダーを含む、請求項1~6のいずれか一項に記載のプロセス。前記ポリマーバインダーが、ポリマー樹脂、ポリマーバインダー繊維、及びこれらの組み合わせから選択される、請求項7に記載のプロセス。前記ポリマーバインダーが、前記濃縮剤の粒子に実質的に付着しない、請求項7又は8に記載のプロセス。前記粒子が、前記多孔質繊維性不織布マトリックス中に機械的に捕捉されている、請求項1~9のいずれか一項に記載のプロセス。前記粒子がミクロ粒子を含む、請求項1~10のいずれか一項に記載のプロセス。前記金属ケイ酸塩が非晶質である、請求項1~11のいずれか一項に記載のプロセス。前記金属が、マグネシウム、カルシウム、亜鉛、アルミニウム、鉄、チタン、及びこれらの組み合わせから選択される、請求項1~12のいずれか一項に記載のプロセス。前記金属がマグネシウムである、請求項1~13のいずれか一項に記載のプロセス。前記試料が流体の形態である、請求項1~14のいずれか一項に記載のプロセス。前記標的細胞検体が、細菌、菌類、酵母、原生動物、ウイルス、細菌内生胞子の細胞、これらの構成要素、及びこれらの組み合わせから選択される、請求項1~15のいずれか一項に記載のプロセス。前記接触が、前記試料を前記濃縮デバイスに通すことによって行われる、請求項1~16のいずれか一項に記載のプロセス。前記検出が、培養に基づく方法、顕微鏡及びその他のイメージング方法、遺伝子学的検出方法、免疫学的検出方法、発光に基づく検出方法、及びこれらの組み合わせから選択される方法によって行われる、請求項1~17のいずれか一項に記載のプロセス。a1i少なくとも1つのフィブリル化繊維、及びii少なくとも1つのポリマーバインダー、を含む多孔質繊維性不織布マトリックス、並びに2少なくとも1つの非晶質で回転楕円体状の金属ケイ酸塩を含む少なくとも1つの濃縮剤の複数の粒子であって、前記多孔質繊維性不織布マトリックス中に捕らえられている、前記複数の粒子、を含む濃縮デバイスを提供すること、b少なくとも1つの標的細胞検体を含む流体試料を提供すること、及びc前記少なくとも1つの標的細胞検体の少なくとも一部が、前記濃縮デバイスに結合される又は捕捉されるように、前記流体試料を前記濃縮デバイスに通すこと、を含む、濃縮プロセス。前記プロセスが、少なくとも1つの結合した標的細胞検体の存在を検出することを更に含み、及び/又は前記非晶質で回転楕円体状の金属ケイ酸塩が、非晶質で回転楕円体状のケイ酸マグネシウムであり、及び/又は前記多孔質繊維性不織布マトリックスが湿式堆積プロセスによって形成されている、請求項19に記載のプロセス。a多孔質繊維性不織布マトリックス、及びb非晶質で回転楕円体状の金属ケイ酸塩を含む少なくとも1つの濃縮剤の複数の粒子、を含む濃縮デバイスであって、前記粒子が、前記多孔質繊維性不織布マトリックス中に捕らえられている、濃縮デバイス。a少なくとも1つの請求項21に記載の濃縮デバイス、及びb請求項1に記載のプロセスを実施するために用いられる少なくとも1つの試験容器又は試験試薬、を含む、キット。a複数の繊維を提供すること、b非晶質で回転楕円体状の金属ケイ酸塩を含む少なくとも1つの濃縮剤の複数の粒子を提供すること、及びc前記複数の繊維の少なくとも一部を、前記複数の粒子の少なくとも一部がその中に捕らえられている多孔質繊維性不織布マトリックスに形成すること、を含む、濃縮デバイスの調製プロセス。前記形成することが湿式堆積プロセスにより実施され、及び/又は前記非晶質で回転楕円体状の金属ケイ酸塩が非晶質で回転楕円体状のケイ酸マグネシウムである、請求項23に記載のプロセス。前記湿式堆積プロセスが、a少なくとも1つの分散液中の前記複数の繊維、前記複数の粒子、及び少なくとも1つのポリマーバインダーの分散体を形成すること、b前記ポリマーバインダーを、前記複数の繊維の少なくとも一部の上に堆積させること、並びにc前記分散体から前記分散液を除去すること、を含む、請求項24に記載のプロセス。a多孔質繊維性不織布マトリックス、及びb非晶質で回転楕円体状の金属ケイ酸塩を含む少なくとも1つの濃縮剤の複数の粒子、を含み、前記粒子が、前記多孔質繊維性不織布マトリックス中に捕らえられている、フィルター媒体。本発明の目的及び利点は、以下の実施例によって更に例示されるが、これらの実施例において列挙される特定の材料及びその量は、他の諸条件及び詳細と同様に、本発明を過度に制限するものと解釈されるべきではない。以下の実施例における全ての部分、割合、比率などは、特に記載がない限り、重量によるものとする。用いた溶媒及びその他の試薬は、特に記載がない限り、Sigma-AldrichChemicalCompanyMilwaukee,WIから入手した。全ての微生物培養物をTheAmericanTypeCultureCollectionATCC;Manassas,VAから購入した。特に指示しない限り、実験結果は2回の試験の平均である。トリプチックソイ寒天プレート上に選択した微生物を画線した後、プレートを37°Cで一晩インキュベートすることによって、一晩培養物を調製した。全ての微生物の計数は、標準的なコロニー形成単位の微生物計数方法に従って行われ、計数は概数である。濃縮剤結晶質ケイ酸マグネシウム濃縮剤以下、タルクは、MallinckrodtBaker,Inc.Phillipsburg,NJから購入した。非晶質で回転楕円体状のケイ酸マグネシウム濃縮剤以下、AS-タルクは、3M商標CosmeticMicrospheresCM-111として入手した固体球の形状;粒子密度2.3g/立方センチメートル;表面積3.3m2/g;粒径:約11マイクロメートルより90小さい、約5マイクロメートルより50小さい、約2マイクロメートルより10小さい;3MCompanySt.Paul,MNより入手。ゼータ電位測定TM200自動滴定モジュール、pH電極、及びインライン電導度セルを備えた、ColloidalDynamicsAcoustosizerII商標多周波数電気音響スペクトル分析器ColloidalDynamics,Warwick,RIを用いて、タルク及びAS-タルク濃縮剤の水分散液MilliporeCorporationBedford,MAのMilli-Q商標Elix10商標SynthesisA10脱イオンシステムを使用することにより得られる18メガオームの脱イオン水中の、それぞれ5.75重量パーセントのタルク及び5.8重量パーセントのAS-タルクのゼータ電位を、添加した塩化水素酸の関数pHとして測定した。次の一般的なパラメーターの極性較正及び極性試料設定を用いて、測定を行った。pH約7で、AS-タルクは約-12mVのスモルコフスキーゼータ電位を呈し、タルクは約-8mVのスモルコフスキーゼータ電位を呈した。表面組成分析タルク及びAS-タルク濃縮剤の試料の表面組成をX線光電子分光法XPS、ESCAとしても既知であるにより分析した。粉末の試料を、アルミニウム箔上の両面感圧接着テープに押し付けた。圧縮窒素ガスを吹き付けることにより、過剰の粉末を各試料表面から除去した。単色Al-KαX線励起源1487eV及び一定パスエネルギーモードで動作する半球状電子エネルギー分析器を有するKratosAXISUltra商標DLD分光計KratosAnalytical,Manchester,Englandを用いて、スペクトルデータを取得した。試料表面に対して測定して90度のテイクオフ角度で±10度の受光立体角で放出光電子を検出した。低エネルギー電子フラッドガンを使用して、表面帯電を最少化した。アノードに対する140ワットの電力及び2×10-8Torrのチャンバー圧力を用いて、測定を行った。約300マイクロメートル×約700マイクロメートルの寸法の各濃縮剤試料の表面の一領域を各データ点に対して分析した。各試料の3つの領域を分析し、平均して、報告された平均原子パーセント値を得た。標準のVision2商標ソフトウェアKratosAnalytical,Manchester,Englandを用いて、データ処理を行った。結果XPSにより検出可能なレベルで濃縮剤の表面上に存在する元素を以下の表Aに示す。材料:■全ての細菌及び酵母保存培養物サッカロマイセスセレヴィシエATCC201390、リステリアモノサイトゲネスATCC51414、大腸菌ATCC51813、緑膿菌ATCC9027、黄色ブドウ球菌ATCC6538、及びリステリアイノキュアATCC33090は、特に指定しない限り、TheAmericanTypeCultureCollectionManassas,VAから購入した。試験用微生物を、標準的微生物学技法に従って、トリプチックソイ寒天プレート上に保存培養物を画線し、プレートを37°Cで一晩インキュベートすることによって調製した画線培養物から単離した。■以下の繊維はMinifibers,Inc.JohnsonCity,TNから入手した。-繊維1-1デニールのフィブリル化ポリエチレン繊維FYBREL商標620-繊維2-フィブリル化ポリエチレン繊維FYBREL商標400-繊維3-6デニール、長さ3.125mm0.125インチのナイロン短繊維-繊維4-6デニール、長さ6.25mm0.25インチのナイロン短繊維-繊維5-6デニール、長さ12.5mm0.5インチのナイロン短繊維-繊維7-1デニールのエチレンビニルアセテートシース/ポリプロピレンコア2成分繊維■繊維6-長ガラス繊維Schuller,Inc.Denver,COのMicro-Strand106-475Glass繊維ガラス■ラテックスバインダー-AirProductsPolymersAllentown,PAからAirflex600BPとして購入した50重量wt固形分酢酸ビニルエマルション■凝集剤-MP9307凝集剤ジメチルアミンとエピクロロヒドリンとのコポリマーの水溶液と考えられる、MidsouthChemicalCo.,Inc.,Riggold,LA■AS-タルク-非晶質ケイ酸マグネシウム回転楕円体上述した3MCompanyPaul,MNから入手の3M商標CosmeticMicrospheresCM-111■BHIブロス-DIFCO商標Bovineハートインフュージョンブロス、BectonDickinsonSparks,MDの汎用増殖培地、メーカーの説明書に従って3.7重量wt濃度で調製■緩衝液-Butterfield緩衝液、pH7.2±0.2;リン酸2水素カリウム緩衝液;VWRカタログ番号83008-093;VWR,WestChester,PA■トリプチックソイ寒天プレート-BectonDickinsonSparks,MDのDifco商標トリプチックソイ寒天、Difco商標トリプチックソイブロスBectonDickinson,Sparks,MDを使用してメーカーの説明書に従って3重量wtで調製■MOXプレート-Oxford培地、リステリア菌用に変更、HardyDiagnosticsSantaMaria,CAより入手の寒天系増殖培地■YPD寒天プレート-5重量のDifco商標YeastExtractPeptoneDextose粉末及び1.5重量のDifco商標寒天粉末を用いてメーカーの説明書に従って調製した寒天プレート粉末は共にBectonDickinsonSparks,MDより入手■大腸菌プレート-3M商標Petrifilm商標E.coli/Coliform計測プレート少なくとも1つの発酵性栄養素を含む平板型フィルム培養デバイス;3MCompany,St.Paul,MN■ACプレート-3M商標Petrifilm商標好気性菌計測プレート再水和可能な乾燥培地を含む平板型フィルム培養デバイス;3MCompany,St.Paul,MN■Y/Mプレート-3M商標Petrifilm商標YeastandMold計測プレート再水和可能な乾燥培地を含む平板型フィルム培養デバイス;3MCompany,St.Paul,MN■PIAプレート-Teknova製のシュードモナス分離寒天培地;VWRWestChester,PAより購入■C-寒天プレート-BBL商標CHROMagar商標黄色ブドウ球菌プレート寒天系増殖培地;BectonDickinson製;VWRWestChester,PAより購入■注射器-BDLuer-Lok商標チップシリンジ;VWRWestChester,PAより購入■Elisa検定-3M商標TECRA商標リステリア菌可視イムノ検定キット;3MCompanySt.Paul,MN■ストマッカー及びストマッカーバッグ-Stomacher商標400サーキュレータラボラトリーブレンダー及びStomacher商標ポリエチレンフィルターバッグ、SewardCorp.Norfolk,UK;VWRWestChester,PAより購入用語■多孔質繊維性不織布マトリックス-以下の実施例及び比較例では、乾燥フェルト、パッド、マトリックス、ディスク、又はフィルターと呼ばれる場合もある。■固形物滞留-用語固形物滞留は、パッド形成プロセス中に多孔質繊維性不織布マトリックス中に留まる全固形物の重量パーセントを指す。完成した乾燥多孔質不織布繊維マトリックスの総重量を、凝集剤以外のマトリックスを作製するために使用した全固形物の総重量例えば、ラテックスバインダーの固形物、繊維、及びAS-タルクの総重量で割って計算された。■CFU-コロニー形成単位■コロニー数-微生物コロニーは、特に明記しない限り、標準的な微生物学的手順に従って手作業で計数された。全てのコロニー計数は概数であった。■濾液数-濾液中の微生物コロニーの数■前濾過数-前濾過試料中の微生物コロニーの数■MCE-多孔質繊維性不織布マトリックスの微生物捕捉効率又は結合効率は、マトリックスがいかに良好に微生物を捕捉するかの評価である。MCEパーセントは次式によって決定された。MCE=100-[濾液計数/前濾過計数×100]実施例1~17及び比較例C1~C4:濃縮デバイス1~17及びC1~C4の調製表1に示される繊維及び水の組成を有する繊維プレミックスを調製した。各繊維プレミックスは、最初にフィブリル化繊維繊維1又は繊維2と指定された量の水道水とを、4LのブレンダーWaringの市販のHeavyDutyBlender、モデル37BL84内で中速で90秒間ブレンドすることによって調製された。繊維が癒着nits又は塊なく均一に分散されたことを確実にするために繊維を検査し、必要ならば、あらゆる塊を粉砕するために繊維を更にブレンドした。次に、更にブレンドしながら他の指定された繊維を加えた後、指定された量のプレミックスをステンレス鋼製ビーカーに加え、速度設定4のインペラミキサーFisherScientificStedfastStirrerモデルSL2400、VWRWestChester,PAより入手可能を使用して5分にわたって混合した。ラテックスバインダーは、使用する場合、50mLビーカー内の約25mLの水道水中に分散され、プレミックスに添加された。50mLビーカーを更に25mLの水道水ですすぎ、これもプレミックスに加え、得られた混合物を約2分にわたってブレンドした。凝集剤は、使用する場合、同様にビーカー内の約25mLの水道水中に分散され、ブレンドしながら混合物に加えられた後、ビーカーからの別の25mLのすすぎ水を加えた。ラテックスバインダーが溶液から繊維上に析出し、プレミックスの液相は、濁った状態から実質的に透明に変化した。次いで、AS-タルク粒子を混合物に加え、1分間ボルテックス混合した。TAPPI商標パッドメーカー装置padmakerapparatusWilliamsApparatusWatertown,NYを使用してフェルトを調製した。この装置は、約20cm8インチの正方形で深さ20cm8インチの密閉箱を有し、この密閉箱は、底部の近くに細目スクリーン、及びこのスクリーンの下に排水弁を有していた。この箱のスクリーンの上方約1cmの高さまで水道水を充填した。粒子含有混合物を箱に注ぎ込み、弁を直ちに開いて、箱から水を引き出す真空を形成した。得られた湿式フェルトの厚さは約3mmであった。この湿式フェルトを、装置から吸い取り紙のシート20cm×20cm8インチ×8インチ、96ポンド43.5kgの白色紙、AnchorPaperSt.Paul,MNの上に移した。フェルトを、フェルトの水分に応じて2~4層の吸い取り紙の間に挟み、排出される水がもはや見られなくなるまで、空気で動くプレスセットの中の2つの強化スクリーンの間で、413kPa60psi約82.7kPa12psiの圧力がフェルトに加わるように算出されるにて1~2分間圧縮した。次に、圧縮されたフェルトを新しい吸い取り紙のシート上に移し、150°Cに設定されたオーブンBlueM,BlueIsland,IL;Stabil-Therm商標モデルOV-560A2内に約40分間入れて残留水を除去し、ラテックスバインダーを硬化及び/又はポリマーバインダー繊維を融解した。実施例3~5及びC2では、濡れた状態のフェルトをパッドメーカーの中に残し、重い約5kg10ポンドステンレス鋼製ローラーをフェルト上で転がして、フェルトから水分を取り除いた。次に、本質的に上記の手順に従ってフェルトを拭い取った。実施例16は、ラテックスバインダーを添加する前にAS-タルク粒子を繊維プレミックスに加えたこと以外は、本質的に上記手順によって調製された。得られた多孔質繊維性不織布マトリックスをプラスチックバッグの中に密封し、0.5kGy/時間で総線量4kGy、8時間ガンマ線照射するか、又は121°Cで15分間オートクレーブして、マトリックスを滅菌した。正方形の試料マトリックス20cm×20cm8インチ×8インチを選択された実施例のマトリックスから切断し、秤量し、表2に示されるようにこれら試料マトリックスの固形物滞留の値を決定した。全ては、試料を作製するために繊維プレミックスの全バッチを使用したことを示す。実施例18~20及び比較例C5:濃縮デバイス3~5及びC2の試験画線培養物から単離されたリステリアイノキュアコロニーを5mLのBHIブロスに接種し、30°Cで一晩18~20時間インキュベートした。108CFU/mLコロニー形成単位/mLの一晩培養物を緩衝液で希釈し、100mLのBHIブロスに接種して、104CFU/mL合計で106CFUを有する細菌懸濁液を得た。円形ディスク直径48mmを実施例3、5、及びC2のマトリックスから打ち抜き、121°Cで15分間オートクレーブして、滅菌した。ディスクを正圧手動濾過装置positivepressuremanualfiltrationdeviceの薄膜支持体上に置き、この支持体を装置のフィルター本体に取り付けた。この装置は、国際公開特許番号WO2008/150779図1A及び1Bに記載されている。細菌懸濁液を装置に注ぎ込み、プランジャで押して濾液を得た。この手順を各ディスクに対して実施した。100マイクロリットル体積の2つの濾液及び前濾過対照を、緩衝液で1:10、1:100、及び1:1000に希釈し、MOXプレート上に塗り、37°Cで18~20時間インキュベートした。コロニーを手作業で計数し、微生物捕捉効率MCEを算出した。結果を表3に示す。実施例21~24:濃縮デバイス3の試験表4に示される濃度を有するリステリアイノキュアの細菌懸濁液を、本質的に実施例18の手順に従って一晩培養物から調製した。この懸濁液を、正圧手動濾過装置を使用して、実施例3で調製されたマトリックスの直径48mmの滅菌済みディスクを通して濾過した。得られた濾液及び濾過前の懸濁液の試料を、本質的に実施例18の手順に従って希釈し、塗り、インキュベートした。コロニーを手作業で計数し、微生物捕捉効率を算出した。結果を表4に示す。実施例25及び26:濃縮デバイス4の試験BHIブロス中のリステリアイノキュアの細菌懸濁液100mL及び250mLを本質的に実施例18の手順に従って調製し、各細菌懸濁液は、105CFU/mL合計で107CFUの最終濃度を有していた。実施例4からのマトリックスの直径48mmの滅菌済みディスクを正圧手動濾過装置に入れ、100mLの細菌懸濁液をプランジャで押してこのディスクに通過させた。装置を分解して、ディスクを滅菌した培養皿に移し、更に分析した。清浄なディスクを使用して装置を再組立し、250mLの細菌懸濁液をプランジャで押して通過させた。手動濾過装置の容量は100mLであったので、250mLの細菌懸濁液は、100mL、100mL、及び50mLの量でプランジャで押された。懸濁液は全てディスクを通過し、これは目詰まりがなかったということを示している。得られた濾液、並びに濾過していない対照懸濁液を、本質的に実施例18の手順に従って希釈し、塗り、インキュベートした。コロニーを手作業で計数し、微生物捕捉効率を算出した。結果を表5に示す。100mL及び250mLの濾過工程の後の濾過後のディスクを滅菌済みのハサミで分断し、緩衝液1mLの入った滅菌した50mLポリプロピレン製遠心分離管に加えて沸騰させた。次に、メーカーの説明書に従ってディスクをELISA検定で処理し、陽性であることが見出されたキットの参照カードを使用した目視イムノアッセイ。表5のデータは、ディスクが、使用した比較的大きな試料体積中の細菌を効果的に濃縮したことを示している。細菌懸濁液は、初期の100mL又は250mLから、ELISA検定で必要な少量1mL未満に濃縮された表5の濃度倍数を参照のこと。緩衝液中で沸騰させてもディスクは崩壊せず、ディスク材料は検定を有意に妨げなかった。実施例27~29及び比較例C6:濃縮デバイス4、6、7、及びC3の試験側部真空ポートを有する1000mLのフラスコに、多孔質繊維性不織布マトリックス又はフィルターの支持体としての役割を果たす焼結ストッパーを取り付けた。支持体領域は、多孔質繊維性不織布マトリックスの直径36mm又は直径48mmの滅菌済み円形ディスクを保持するように寸法設定された。シリンダの上部及び底部周囲にフランジリムを有する開口収集シリンダ最大容積100mLをフラスコに固定し、それらの間にストッパーを固定した。フラスコと真空ポートを備えた栓とを可撓性のホースで接続して、真空濾過装置を提供した。装置は、各使用期間に先立ち、121°Cにて15分間オートクレーブすることによって滅菌され、使用中は、各試料を濾過した後70重量wtのエタノール及び蒸留水ですすがれた。実施例4、6、7、及びC3の多孔質繊維性不織布マトリックスからディスクを打ち抜き、滅菌処理した。実施例4及び6からのディスクは直径48mmであり、実施例7及びC3からのディスクは直径36mmであった。それぞれが約105CFU/mL合計107CFUを含有する、BHIブロス中のリステリアイノキュアの細菌懸濁液100mLを、本質的に実施例18の手順に従って調製した。各ディスクに関し、懸濁液を収集シリンダに注ぎ込み、真空を適用した。得られた濾液、並びに前濾過懸濁液を、本質的に実施例18の手順に従って希釈し、塗り、インキュベートした。コロニーを手作業で計数し、微生物捕捉効率を算出した。結果を表6に示す。真空濾過を用いたので、濾過は比較的迅速に達成された。それにもかかわらず、濃縮デバイス4、6、及び7のディスクによる細菌捕捉は、70を超えていた。実施例30並びに比較例C7及びC8:濃縮デバイス9及びC3の試験並びに粒子状濃縮剤のみAS-タルクとの比較リステリアモノサイトゲネスATCC51414の画線培養物を使用して、3mLのBHIブロス中でDensiCHEK商標濃度計bioMerieux,Inc.Durham,NCを使用して0.5マクファーランド標準分散した微生物を含む濁度標準を調製した。約103CFU/mLを含有する細菌懸濁液を得るために、約108CFU/mLを含有する得られた細菌ストックをBHIブロスで連続的に希釈した。直径14mmのディスクを実施例9のマトリックスから打ち抜き、滅菌処理し、フィルターホルダー直径13mmのSwinnex商標フィルターホルダー;MilliporeCorp.,Bedford,MAに挿入した。3立方センチメートルccの注射器を使用して1.5mLの細菌懸濁液をホルダーのディスクの上に供給した。懸濁液を手作業で濾過し、濾過は20秒で完了した。実施例C3からのディスクも調製し、同じ方法で試験し、同じ時間内で濾過した。得られた濾液を100マイクロリットル体積不希釈でMOXプレート上に塗った。各試験後に表面が滅菌されたピンセットを使用してディスクをフィルターホルダーから取り外し、100マイクロリットルの緩衝液でMOXプレート上を塗った。平板を37°Cで18~20時間インキュベートした。コロニーを手作業で計数し、微生物捕捉効率を算出した。結果を表7に示す。実施例C5は、20mgのAS-タルク粉末を、滅菌した5mLポリプロピレン管VWRWestChester,PAから入手のBDFalcon商標の中の1.1mLの細菌懸濁液に加えることによって調製された。管に蓋をし、1分当り14サイクルで揺動する揺動プラットフォームThermolyneVariMix商標揺動プラットフォーム;BarnsteadInternationalIowaの上に20秒間置いた。次いで、管をスタンドに1分間移しtranferred、その後AS-タルク粉末のほとんどの粒子は管の底に沈殿した。懸濁したAS-タルク粒子を含有している100マイクロリットル体積の得られた上澄みをMOXプレート上に塗り、本質的にディスクのプレートと同じ方法で処理インキュベートした。100マイクロリットル体積の細菌懸濁液を1:10に希釈し、更に、本質的に対照前濾過試料と同じ方法で塗りインキュベートした。対照上のコロニー数は2600CFUであった。コロニーを手作業で計数し、微生物捕捉効率を算出した。結果を表7に示す。実施例31並びに比較例C9及びC10:濃縮デバイス2及びC1並びに市販のナイロンフィルターの試験七面鳥の挽肉脂肪分12と標示を近くのスーパーで購入した。七面鳥の挽肉11gを殺菌したストマッカーバッグに入れ、ストマッカー内で毎分回転数rpm230の速度で30秒間、緩衝液99mLと共にブレンドした。ブレンドした試料を、実施例2のマトリックスの48mmの滅菌済みディスクを収容している上記正圧手動濾過装置実施例18参照に注ぎ込んだ実施例31。100mLのブレンド試料がディスクを通過するまで装置のプランジャを押し進めることによって正圧を加え、濾過時間を記録した。実施例C1のディスク比較例C9、及び3MPurification,Inc.St.Paul,MNから入手した0.45マイクロメートルのナイロンフィルター比較例C10を使用して、手順を繰り返した。結果を下表8に示す。近くのスーパーで購入した殺菌されたパルプを含まないオレンジジュースを使用してこの手順を繰り返した。11g体積のジュースを99mLの緩衝液に加え、約1分間かき回して混合し、得られた試料100mLを濾過した。濾過時間を測定し、結果が表8に示されている。表8のデータは、肉及びジュース試料が実施例31及び比較例C9のディスクを通して無事に濾過され、該ディスクは、比較例C10の標準的な微生物学的フィルターよりも目詰まりに対して抵抗を有していたことを示している。実施例32~43及び比較例C11~C13:濃縮デバイス6、8~17、C3~C4、及び市販のポリカーボネートフィルター膜の試験冷凍牛挽肉脂肪分15と標示を近くのスーパーで購入した。解凍した牛挽肉11gを殺菌したストマッカーバッグ内の緩衝液99mLと共にブレンドし、ストマッカー内で230rpmで30秒間処理した。表9に示される実施例及び比較例からのマトリックスのディスクを、本質的に実施例31の手順に従って試験した。市販のフィルター膜直径14mmのWhatman、0.22マイクロメートルのポリカーボネートフィルター膜、VWRWestChester,PAより購入も同様に、比較例C13として試験した。目詰まり及び流れ停止前にディスク又は膜を通過したブレンドされた牛肉の体積、並びに目詰まり及び流れ停止前の通過期間を記録し、表9に示す。近くのスーパーで購入した豆乳を使用して第2組の同じマトリックスを試験した。豆乳11mLを緩衝液99mLと共にかき回して試料を調製した。結果を表9に示す。適用せずは、濃縮デバイスを通過する顕著な流れなしに30秒後に濾過が打ち切られたことを示す。実施例43:濃縮デバイス14の試験30°CでインキュベートしたYPD寒天プレートからのサッカロマイセスセレヴィシエATCC201390の画線培養物を使用して、3mLのビール中で0.5マクファーランド標準を調製した。ビールは地元の小売店で購入した。約106CFU/mLを含有する得られた酵母ストックを、非添加unspikedビールで連続して希釈して、105CFU/mLを含有する酵母懸濁液を得た。懸濁液の1:100希釈物を100mLのビールに接種して、10CFU/mLを得た合計で試料中約1000CFU。添加spikedビールを、実施例14から打ち抜いた14mm滅菌済みディスクを収容している上記フィルターホルダーに、20ccの注射器を使用して5回に分けて供給した。100mLの試料全てがディスクを通過した後、フィルターホルダーを分解し、表面が滅菌されたピンセットを使用してディスクを空の滅菌された1.5mLポリプロピレンキュベット3M商標CLEAN-TRACE商標SurfaceATPサンプリング装置;3MCompany,St.Paul,MNに移した。100マイクロリットルの酵素系及び50マイクロリットルのキットの抽出剤3M商標CLEAN-TRACE商標SurfaceATPシステム;3MCompany,St.Paul,MNをキュベットに加えて、濃縮された試料を調製した。キュベットの内容物を、ボルテックスミキサーVWR商標FixedSpeedボルテックスミキサー;VWR,WestChester,PA上で約3200rpmで5秒間ボルテックスすることによって混合した。ベンチトップ型照度計benchtopluminometerTurnerBiosystemsSunnyvale,CAの20/20nシングルチューブルミノメーターを使用して相対光単位RLUを10秒おきに1分間測定することにより、濃縮試料のATP信号を決定した。ルミノメーターと共に供給された20/20nSISソフトウェアを使用して、ルミノメーターから発光値ATP信号を得た。結果を表10に示す。ATP信号は、104CFU/mLの酵母ストックの1:10希釈物からの103CFU103CFU対照を含有する酵母懸濁液100マイクロリットルを使用して100信号対照、及び濾過されていない添加ビール飲料100マイクロリットルを使用して添加ビール対照、対照に関しても、上記手順に従って決定された。バックグラウンドATP濃度は、100mLの非添加ビールを実施例14の多孔質繊維性不織布マトリックスを通して濾過して、非添加濾液を得、対照マトリックスを得るために上記手順に従って使用したマトリックスを処理することによって調製された試料に対して決定された。100マイクロリットル体積のビールのみ濾過せずも試験した非添加ビール対照。結果を表10に示す。表10に示されるATP信号を非添加ビール対照からバックグラウンドATP信号を差し引いた後の濃縮試料から得たRLU値補正RLU及び103CFU対照からのRLUに基づいて次の通りに算出した。ATP=補正RLU/103CFU対照からのRLU×100100mLのビール試料添加ビール対照、並びに104CFU/mL酵母ストックの1:100希釈試料のうちの1mLをメーカーの説明書に従ってY/Mプレート上に塗ることによって、酵母数を決定した。希釈試料は合計で1060CFUの酵母細胞を有した。データは、濃縮試料からのサッカロミセスセレビシエのATP信号が、未濾過の添加対照の約8倍であったことを示している。実施例44~45及び比較例C14:濃縮デバイス12、13、及びC4の試験リステリアモノサイトゲネスの画線培養物を使用して、3mLのBHIブロス中で0.5マクファーランド標準を調製した。約103CFU/mL含有する細菌懸濁液を得るために、108CFU/mLを含有する得られた細菌ストックをBHIブロスで連続的に希釈した。実施例12のマトリックスから14mmのディスクを打ち抜き、フィルターホルダーに挿入し、本質的に実施例30に記載の手順に従って試験した。1.5mL体積の懸濁液は、15秒で完全にディスクを通過した。実施例13及び比較例C4からのディスクを使用して濾過を繰り返した。各ディスクから得られた濾液、並びに未濾過の細菌懸濁液対照を100マイクロリットル体積のMOX寒天プレートに塗り、37°Cで18~20時間インキュベートした。コロニーを手作業で計数し、微生物捕捉効率を決定した。未濾過対照試料は2800CFU/mLを有していた。結果を表11に示す。表面が滅菌されたピンセットを使用して各試験の使用済みディスクをフィルターホルダーから取り外し、100マイクロリットルの緩衝液をMOXプレート上に塗った。プレートを37°Cで18~20時間インキュベートした。全てのプレートはリステリアモノサイトゲネスの増殖を示した。実施例46~49:濃縮デバイス8及び12の試験緑膿菌ATCC9027の画線培養物を使用して、3mLの濾過した蒸留脱イオン水Milli-Q商標Gradient脱イオン化系から入手の18メガオーム水;MilliporeCorporationBedford,MA中で0.5マクファーランド標準を調製した。102CFU/mLの水中細菌懸濁液を得るために、108CFU/mLを含有する得られた細菌ストックを同じ水で連続的に希釈した。実施例8の多孔質繊維性不織布マトリックスの14mmディスク厚さ1.066mmを打ち抜き、上記のフィルターホルダーに挿入した。1mL体積の細菌懸濁液を、本質的に実施例30に記載の手順に従って手作業で濾過した。濾過は15秒で完了した。得られた濾液をメーカーの説明書に従ってACプレート上に塗った。表面が滅菌されたピンセットを使用してディスクをフィルターホルダーから取り外し、100マイクロリットルの緩衝液をPIAプレート上に塗った。実施例12からのマトリックスのディスク厚さ1.336mmを使用して手順を繰り返した。1mL体積の水中細菌懸濁液も対照としてACプレート上に塗った。全てのプレートを37°Cで18~20時間インキュベートした。ACプレート上の塗られた濾液からのコロニー数をメーカーの説明書に従って得た。未濾過細菌懸濁液のコロニー数は140CFU/mLであった。微生物捕捉効率の結果を表12に示す。黄色ブドウ球菌ATCC6538細菌懸濁液を、黄色ブドウ球菌の画線培養物から本質的に同じ方法で調製した。懸濁液を、実施例8及び12のマトリックスから打ち抜かれたディスクを通して濾過し、得られた濾液を、本質的に緑膿菌に関して記載された手順に従って微生物捕捉効率に関して分析した。未濾過細菌懸濁液のコロニー数は170CFU/mLであった。結果を表12に示す。使用済みディスクをC-寒天プレート上に塗り、本質的に緑膿菌で用いた手順に従って処理した。緑膿菌の細菌懸濁液が通過したディスクを含む全てのPIAプレートは、緑膿菌が存在するという特徴である黄緑の色素を呈した。黄色ブドウ球菌の細菌懸濁液が通過したディスクを含む全てのC-寒天プレートは、黄色ブドウ球菌が存在するという特徴であるオレンジ-マゼンダ色を呈した。実施例50-水濾過実施例血液寒天プレート5羊血液を有するトリプチックソイ寒天、HardyDiagnostics,SantaMaria,CA上の大腸菌ATCC51813の画線培養物を37°Cで一晩インキュベートした。この培養物を使用して、3mLのButterfield緩衝液中でDensiCHEK商標濃度計bioMerieux,Inc.Durham,NCを使用して0.5マクファーランド標準を調製した。1×108CFU/mLを含有する得られた細菌ストックを、Butterfield緩衝液で連続的に希釈して、約1×106CFU/mLを有する接種材料を得た。100mLの脱イオン水MilliQGradientsystemMillipore,Maに1:100希釈の106細菌/接種材料1mLを接種することによって試験試料を調製し、104CFU/mLを含有する水試験試料を得た水中で合計106CFU。接種した水試料を、表13に示される繊維性不織布マトリックスの直径47mm打ち抜きディスクを保持している濾過装置を通してポンプで送った。装置は、フィルターディスクを本体に保持するための支持体スクリーンを有する、直径約60mm及び高さ約115mmのポリカーボネート製の円筒形本体を有していた。本体の上端部は、壁厚1/80.32cmのPVCチューブカタログ番号60985-522;VWR;Batavia,ILによって蠕動ポンプモデル番号7553-70;ColeParmerに取り付けられた入口ポートを有するねじ付きキャップで閉じられた。水試料を濾過装置に供給するためにポンプを使用した。下端部は出口ポートを有し、円筒の底部を閉じるためにねじ山が付けられていた。漏れを防止するために螺合部品の間にOリングを配置した。空気をパージすることができるように、装置を上流側で通気した。各マトリックスを2回試験した。接種した水の100mL試料を、濾過装置の中に70mL/分の流量でポンプで送った。殺菌した100mLのポリプロピレン製ビーカー内に濾液を収集した。各過試験の後、装置を分解し、無菌のピンセットを使用してディスクを取り出した。各試験の間に、フィルターを通した500mLの滅菌脱イオン水で濾過装置をすすいだ。100マイクロリットル体積の各濾液及び前濾過懸濁液を、Butterield緩衝液で1:10及び1:100に希釈し、大腸菌プレート上に塗った。平板を37°Cで18~20時間インキュベートした。メーカーの説明書に従ってプレートからのコロニー数を測定した。対数減少値LRVは、水フィルターの細菌除去能力の指標である。この値は、塗られた濾過試料及び前濾過試料から得た計数に基づき、次の式を用いて算出された。LRV=前濾過試料中のCFU/mLの対数-濾過試料中のCFU/mLの対数前濾過懸濁液は、平均で9500CFU/mL~4LogCFU/mLを含有していた。対数減少値を表13に示す。本明細書で引用した特許、特許文献、及び公報に含まれる参照された記述内容は、その全体が、それぞれが個々に組み込まれているかのように、参照により組み込まれる。本発明に対する様々な予見できない修正及び変更が、本発明の範囲及び趣旨から逸脱することなく当業者に明らかとなるであろう。本発明は、本明細書に記載した例示的な実施形態及び実施例によって過度に限定されるものではなく、またかかる実施例及び実施形態は、一例として表されているだけであり、本発明の範囲は、以下のように本明細書に記載した請求項によってのみ限定されることを意図するものと理解されるべきである。"