以下の酵素:aアセチルCoA合成酵素ACS;およびbアセチルCoAアセチル基転移酵素ERG10の活性が増強されている、酵母菌株。以下の遺伝子:aアセチルCoA合成酵素ACSの活性を有するポリペプチドをコードする遺伝子;およびbアセチルCoAアセチル基転移酵素ERG10の活性を有するポリペプチドをコードする遺伝子の発現が増強されている、請求項1に記載の酵母菌株。ACS活性を有するポリペプチドが、i配列番号12または配列番号14で表されるアミノ酸配列を含むポリペプチド、またはii配列番号12または配列番号14で表されるアミノ酸配列において、1もしくは数個のアミノ酸が欠失、置換、付加もしくは挿入されたアミノ酸配列を含み、かつACS活性を有するポリペプチドである、請求項2に記載の酵母菌株。ERG10活性を有するポリペプチドが、i配列番号62で表されるアミノ酸配列を含むポリペプチド、またはii配列番号62で表されるアミノ酸配列において、1もしくは数個のアミノ酸が欠失、置換、付加もしくは挿入されたアミノ酸配列を含み、かつERG10活性を有するポリペプチドである、請求項2または3に記載の酵母菌株。さらに、以下の遺伝子:cATP-クエン酸除去付加酵素ACLの活性を有するポリペプチドをコードする遺伝子;dミトコンドリア内膜カルニチン輸送体CRC1の活性を有するポリペプチドをコードする遺伝子;およびeカルニチンアセチル転移酵素遺伝子YAT1の活性を有するポリペプチドをコードする遺伝子からなる群から選択される少なくとも一種の遺伝子の発現が増強されている、請求項1~4のいずれか一項に記載の酵母菌株。ACL活性を有するポリペプチドが、ACL1活性を有するポリペプチドおよびACLY活性を有するポリペプチドからなるものであり、ACL1活性を有するポリペプチドが、i配列番号32で表されるアミノ酸配列を含むポリペプチド、またはii配列番号32で表されるアミノ酸配列において、1もしくは数個のアミノ酸が欠失、置換、付加もしくは挿入されたアミノ酸配列を含み、かつACL1活性を有するポリペプチドであり、ACLY活性を有するポリペプチドが、i配列番号34で表されるアミノ酸配列を含むポリペプチド、またはii配列番号34で表されるアミノ酸配列において、1もしくは数個のアミノ酸が欠失、置換、付加もしくは挿入されたアミノ酸配列を含み、かつACLY活性を有するポリペプチドである、請求項5に記載の酵母菌株。CRC1活性を有するポリペプチドが、i配列番号24で表されるアミノ酸配列を含むポリペプチド、またはii配列番号24で表されるアミノ酸配列において、1もしくは数個のアミノ酸が欠失、置換、付加もしくは挿入されたアミノ酸配列を含み、かつCRC1活性を有するポリペプチドである、請求項5または6に記載の酵母菌株。YAT1活性を有するポリペプチドが、i配列番号28で表されるアミノ酸配列を含むポリペプチド、またはii配列番号28で表されるアミノ酸配列において、1もしくは数個のアミノ酸が欠失、置換、付加もしくは挿入されたアミノ酸配列を含み、かつYAT1活性を有するポリペプチドである、請求項5~7のいずれか一項に記載の酵母菌株。クラブツリー効果陰性酵母である、請求項1~8のいずれか一項に記載の酵母菌株。キャンディダユティリスである、請求項1~9のいずれか一項に記載の酵母菌株。アセチルCoAを経由する代謝産物を合成するための遺伝子により形質転換されているものである、請求項1~10のいずれか一項に記載の酵母菌株。CoA転移酵素サブユニットActfA、CoA転移酵素サブユニットBctfB、アセト酢酸脱炭酸酵素adcおよび二級アルコール脱水素酵素sadhの活性を有するポリペプチドをコードしている4種の遺伝子により形質転換されてなる、請求項11に記載の酵母菌株。請求項1~12のいずれか一項に記載の酵母菌株を培養することを含んでなる、物質を製造する方法。前記物質が、アセチルCoAを経由する代謝産物である、請求項13に記載の方法。前記物質がイソプロパノールである、請求項13または14に記載の方法。以下、実施例を挙げて本発明をより具体例に説明するが、これら実施例は本発明の技術的範囲を制限するものではない。実施例1:高いイソプロパノール耐性を示すキャンディダユティリス株の選抜キャンディダユティリスNBRC0396株、NBRC0619株、NBRC0988株、NBRC0639株、NBRC0626株、NBRC1086株、NBRC10707株、ATCC9255株、ATCC28955株、ATCC44638株、ATCC9206株、ATCC96621株、ATCC18201株、およびATCC15239株を、YPD220g/Lペプトン、10g/L酵母エキス、20g/Lグルコースに接種し、30°Cで培養を行った。定常期の酵母培養液を10倍ごとに段階希釈し、10~100g/Lのイソプロパノールを含むYPD2寒天培地にスポットし、30°Cで培養した。3日間培養を継続し、コロニーの形成を観察した。結果を表1に記載する。以上の結果より、アッセイを行った株の中では、NBRC1086株、ATCC9255株、およびATCC15239株が、最も高い65g/LのIPA耐性を示すことが明らかとなった。実施例2:ピルビン酸脱炭酸酵素遺伝子が破壊されたキャンディダユティリスATCC15239株の構築キャンディダユティリスATCC15239株において、その内因性遺伝子であるピルビン酸脱炭酸酵素遺伝子PDCを破壊した。この遺伝子破壊は、Cre-loxPシステムを用いて国際公開第2010/095750号パンフレットと同様の方法で行った。2回の破壊により、PDC1アレルが完全に欠損した株dPDC1株を構築した。dPDC1株は完全にはエタノール生産能を欠損しなかったが、エタノール生産能は著しく低下していた。実施例3:クロストリジウムアセトブチリカム由来のCoA転移酵素サブユニットA遺伝子、同サブユニットB遺伝子、クロストリジウムベイジェリンキ由来のアセト酢酸脱炭酸酵素遺伝子および二級アルコール脱水素酵素遺伝子を発現するベクターの構築イソプロパノール生合成に関わる4つの遺伝子、クロストリジウムアセトブチリカム由来のCoA転移酵素遺伝子サブユニットActfA、同サブユニットBctfB、クロストリジウムベイジェリンキ由来のアセト酢酸脱炭酸酵素adcおよび二級アルコール脱水素酵素sadhを効率良くキャンディダユティリスで発現させるために、以下の項目を指標として、天然に存在しない新規な遺伝子配列を設計し、合成した:1キャンディダユティリスにおいて多用されているコドンの使用;2遺伝子クローニングに不適当な制限酵素部位の排除;および3染色体組み込み型発現ベクターに導入するための、5’末端におけるXbaIサイトおよび3’末端におけるBamHIサイトの付与。合成されたCoA転移酵素遺伝子サブユニットA遺伝子、同サブユニットB遺伝子、アセト酢酸脱炭酸酵素遺伝子および二級アルコール脱水素酵素遺伝子のヌクレオチド配列を、それぞれ配列番号1、3、5および7に示す。また、これらのヌクレオチド配列によってコードされるアミノ酸配列を、それぞれ配列番号2、4、6および8に示す。これらの遺伝子を有するプラスミドをそれぞれGA09142-ctfA、GA09142-ctfB、GA09142-adc、GA09142-sadhと名付けた。pVT92は、キャンディダユティリスのオロチジン5’酸脱炭酸酵素遺伝子URA3座への組み込みベクターであり、ハイグロマイシン耐性遺伝子を選択マーカーとして有している国際公開第2010/095750号パンフレット。pVT92は、BgllII処理してリニアDNAにすることにより、染色体導入することができる。pVT92は、外来遺伝子を発現させるために、XbaI/BamHIギャップの外側にそれぞれ、グリセルアルデヒド脱水素酵素遺伝子プロモーターとグリセリン酸3’リン酸リン酸化酵素遺伝子ターミネーターを有している。また、pVT92は、プロモーターの5’末端側およびターミネーターの3’末端側には、それぞれNheIサイトおよびSpeIサイトを有している。pVT239は、キャンディダユティリスのアルファアミノアジピン酸還元酵素遺伝子LYS2座への組み込みベクターであり、ジェネティシン耐性遺伝子を選択マーカーとして有している国際公開第2010/095750号パンフレット。pVT239は、NotI処理してリニアDNAにすることにより、染色体導入することができる。また、pVT239は、ジェネティシン耐性遺伝子の5’末端側にSpeIサイトを有している。各イソプロパノール合成酵素遺伝子を含む4つのベクターGA09142-ctfA、GA09142-ctfB、GA09142-adc、およびGA09142-sadhを、XbaIおよびBamHI処理し、アガロースゲル抽出による精製を行った後、同制限酵素で処理したpVT92にライゲーションして、pVT296、pVT298、pVT300およびpVT302を得た。pVT296およびpVT300はSpeI処理し、脱リン酸化を行った。また、pVT298およびpVT302はNheI、SpeI処理を行った後、ctfB発現カセット、sadh発現カセットをそれぞれ含むDNA断片の精製を行い、それぞれpVT296およびpVT300に連結して、pVT321およびpVT325を得た。pVT325をNheIおよびSpeIで処理した後、adc発現カセットとsadh発現カセットを含むDNA断片の精製を行い、pVT239のSpeIサイトに導入し、pVT346を得た。最終的に得られたpVT321はctfAとctfBのそれぞれの発現カセットとハイグロマイシン耐性遺伝子を有し、キャンディダユティリスのURA3座に組み込まれるベクターであり、pVT346はadcとsadhのそれぞれの発現カセットとジェネティシン耐性遺伝子を有し、キャンディダユティリスのLYS2座に組み込まれるベクターである。実施例4:4つのイソプロパノール合成遺伝子を有するキャンディダユティリス株の構築pVT321をBgllIIで消化し、エタノール沈殿により濃縮した。得られたDNA断片を用いて、CutilisATCC15239株、および実施例2で得られたdPDC1株を形質転換し、600μg/mLハイグロマイシンを含むYPD培地に塗抹し、30°Cで2日間培養した。導入した全ての遺伝子を有する株を選抜した。さらにpVT346をNotIで消化し、エタノール沈殿により濃縮した。得られたそれぞれのDNA断片を用いて上記で得られた2株をそれぞれ形質転換し、600μg/mLハイグロマイシンと200μg/mLジェネティシンを含むYPD培地に塗抹し、30°Cで2日間培養した。導入した全ての遺伝子を有する株を選抜し、ATCC15239株由来のイソプロパノール生産株をTMS272株、dPDC株由来のイソプロパノール生産株をTMS290株とした。実施例5:イソプロパノール生産試験実施例4で得られた形質転換体のイソプロパノール生産能の評価を、以下に示すように実施した。各種形質転換体を2mLYPD液体培地20g/Lペプトン、10g/L酵母エキス、20g/Lグルコース/14mL容試験管に接種し、140rpm、30°Cで24時間振とう培養した。得られた前培養液を100mLYPD1020g/Lペプトン、10g/L酵母エキス、100g/Lグルコース/200mL容三角フラスコもしくはYPD10C20g/Lペプトン、10g/L酵母エキス、100g/Lグルコース、45g/L炭酸カルシウム/200mL容三角フラスコに接種し、初期OD600=1、100rpm、30°Cで振とう培養した。培養液から経時的にサンプリングし、0.2μmフィルターでろ過した後に、各種成分の定量分析を行った。グルコース、酢酸、エタノールおよびグリセロールは、高速液体クロマトフラフィー島津製作所製、ISep-ION300カラム東京化成工業製および示唆屈折計を用いて定量した。イソプロパノールおよびアセトンは、ガスクロマトフラフィーGC-2010Plus島津製作所製を用いて定量した。また、フラスコでの簡易的な中和培養としてYPD10C20g/Lペプトン、10g/L酵母エキス、100g/Lグルコース、45g/L炭酸カルシウム培地を用いても同様の実験を行った。非中和条件下での培養試験の結果を図2、中和条件下での培養試験の結果を図3に記載する。なお、データは3反復試行の平均で示した。図2によれば、親株であるATCC15239株およびdPDC1株ではイソプロパノールの生産が認められなかったのに対し、イソプロパノール合成遺伝子を導入したTMS272株およびTMS290株では、それぞれ最大で0.16g/Lおよび0.13g/Lのイソプロパノールの生産が認められた。また、PDC1遺伝子を破壊した株では糖の消費速度および増殖能が著しく低下していた。TMS272株では培養24時間でグルコースが完全に消費され、エタノールの蓄積が認められたが、その後の培養の継続に伴ってエタノール濃度が低下した。エタノール濃度が低下している間もイソプロパノールの生産が認められたことから、TMS272株は、一度生産したエタノールを二次消費することによりイソプロパノールを生産していることが考えられた。dPDC1株に由来するTMS290株ではイソプロパノール生産速度が低下したことから、酵母におけるイソプロパノール生産においては、基質である細胞質のアセチルCoAがエタノールから供給される経路が最も重要であることが示唆された。エタノールの同化は酸化的反応であることから、これらの結果は、酵母によるイソプロパノール生産においてはキャンディダユティリスのような呼吸活性の高いクラブツリー陰性酵母が適している可能性を示唆している。図3によれば、培地に炭酸カルシウムを添加したことにより、TMS272株は1.1g/Lのイソプロパノールを生産し、非中和条件より生産量が増大した。また、TMS272株は、16.2g/Lの酢酸を蓄積しており、何らかの理由により酢酸が蓄積したことでpHが低下し、イソプロパノールの生産を阻害していたことが考えられた。また、TMS290株においても、中和条件下ではイソプロパノール生産量が0.9g/Lまで増大しており、一方で37.4g/Lという高濃度のグリセロールを蓄積していた。実施例6:過剰発現によってイソプロパノール生産性を向上させる遺伝子の選抜過剰発現することによりイソプロパノールの生産性を向上させる遺伝子の選抜を行った。候補遺伝子が触媒する代謝経路を図1に記載する。キャンディダユティリス内在性のアセチルCoA加水分解酵素遺伝子ACH1;ヌクレオチド配列:配列番号9;アミノ酸配列:配列番号10、アセチルCoA合成酵素遺伝子ACS1;ヌクレオチド配列:配列番号11;アミノ酸配列:配列番号12、ACS2;ヌクレオチド配列:配列番号13;アミノ酸配列:配列番号14、細胞質局在型エタノール脱水素酵素遺伝子ADH2;ヌクレオチド配列:配列番号15;アミノ酸配列:配列番号16、ミトコンドリア局在型エタノール脱水素酵素遺伝子ADH3;ヌクレオチド配列:配列番号17;アミノ酸配列:配列番号18、細胞質局在型アセトアルデヒド脱水素酵素遺伝子ALD1;ヌクレオチド配列:配列番号19;アミノ酸配列:配列番号20、ミトコンドリア局在型アセトアルデヒド脱水素酵素遺伝子ALD2;ヌクレオチド配列:配列番号21;アミノ酸配列:配列番号22、ミトコンドリア内膜カルニチン輸送体CRC1;ヌクレオチド配列:配列番号23;アミノ酸配列:配列番号24、ミトコンドリア局在型カルニチンアセチルCoA転移酵素CAT2;ヌクレオチド配列:配列番号25;アミノ酸配列:配列番号26、カルニチンアセチル転移酵素遺伝子YAT1;ヌクレオチド配列:配列番号27;アミノ酸配列:配列番号28、YAT2;ヌクレオチド配列:配列番号29;アミノ酸配列:配列番号30、アセチルCoAアセチル基転移酵素ERG10;ヌクレオチド配列:配列番号61;アミノ酸配列:配列番号62、ヤロウィアリポリティカ由来のATP-クエン酸除去付加酵素遺伝子ACL1;ヌクレオチド配列:配列番号31;アミノ酸配列:配列番号32と、ACLY;ヌクレオチド配列:配列番号33;アミノ酸配列:配列番号34がサブユニットを構成する遺伝子を、それぞれのゲノムDNAを鋳型としてPCRにより増幅した。PCRに用いたプライマーは以下の通りである:ACH1;配列番号35と配列番号36、ACS1;配列番号37と配列番号38、ACS2;配列番号39と配列番号40、ADH2;配列番号41と配列番号42、ADH3;配列番号43と配列番号44、ALD1;配列番号45と配列番号46、ALD2;配列番号47と配列番号48、CAT2;配列番号49と配列番号50、CRC1;配列番号51と配列番号52、YAT1;配列番号53と配列番号54、YAT2;配列番号55と配列番号56、ACL1;配列番号57と配列番号58、ACLY;配列番号59と配列番号60、ERG10;配列番号63と配列番号64。得られたPCR産物をXbaI/BamHI処理して、同制限酵素で処理したpCU155KeijiKondoYutakaMiuraHidetakaSoneKazuoKobayashiHiroshilijimaHighlevelexpressionofasweetproteinmonellininthefoodyeastCandidautilisNatureBiotechnology15453457にクローニングした。pCU155は、シクロヘキシミド耐性遺伝子を選抜マーカーとして有し、URA3座にマルチコピーインテグレーションされるベクターであり、XbaI/BamHIギャップの外側にそれぞれ、グリセルアルデヒド脱水素酵素遺伝子プロモーターと同ターミネーターを有している。これまでに構築しているイソプロパノール生産株のURA3座にはイソプロパノール合成酵素遺伝子が組み込まれているが、Cutilisは高次倍数体であり、URA3座が複数コピー存在するため、さらにURA3座に遺伝子の導入が可能である。また、イソプロパノール合成遺伝子はURA3座に二点組み換えにより挿入されているため、pCU155の組み込みにより、導入された遺伝子の置換が起こることはない。候補遺伝子がクローン化されたプラスミドはBgllIIで消化し、エタノール沈殿により濃縮した。得られたDNA断片を用いてCutilisTMS272株を形質転換し、600μg/mLハイグロマイシン、200μg/mLジェネティシンおよび20μg/mLシクロヘキシミドを含むYPD培地に塗抹し、30°Cで4日間培養した。なお、ACL1とACLYのDNAは混合し、同時に形質転換を行った。得られた各4クローンについて発酵試験を行い、イソプロパノール生産性を調査した。結果を図4に示す。図4によると、ACS1、ACS2、CRC1、YAT1、ERG10、またはACLの過剰発現により、イソプロパノール生産量が1.5~4.0倍になることが明らかとなった。ACS1、ACS2、YAT1、およびACLの各遺伝子はアセチルCoAの合成に関わる酵素遺伝子であり、CRC1遺伝子はアセチルCoA合成の前駆物質をミトコンドリアから細胞質に輸送するキャリアタンパク質遺伝子であり、ERG10遺伝子はアセチルCoAからアセトアセチルCoAを合成する遺伝子である。これらの結果により、酵母によるイソプロパノール高生産のためには、細胞質のアセチルCoAを効率的に生産するための酵素遺伝子の発現または活性をアップレギュレートすることが重要であることが示される。実施例7:ACL1/ACLY、ACS2、ERG10、CRC1およびYAT1を同時に過剰発現するイソプロパノール生産株の構築と培養試験ACL1、ACLY、ACS2、ERG10、CRC1およびYAT1の各遺伝子がクローン化されたプラスミドをBgllIIで消化し、エタノール沈殿により濃縮した。得られた各5μgのDNA断片を混合し、この混合物を用いてTMS272株を形質転換し、600μg/mLハイグロマイシン、200μg/mLジェネティシンおよび10μg/mLシクロヘキシミドを含むYPD培地に塗抹し、30°Cで4日間培養した。得られた80クローンについて発酵試験を行い、イソプロパノール生産量が最も高い株を選抜し、TMS378株とした。TMS378株の培養試験を行った結果を図5に示す。TMS272株が1.3g/Lのイソプロパノールを生産したのに対して、TMS378株は9.8g/Lと約7.5倍のイソプロパノール生産量を示した。また、TMS272株では酢酸が18.1g/L蓄積したのに対して、TMS378株は4.5g/Lと、主要な副産物である酢酸が約4分の1に低下していた。実施例8:TMS378株のイソプロパノール生産における初期OD600および振とう速度の影響イソプロパノール生産に適したTMS378株の培養条件の検討を行った。TMS378株を2mLYPD液体培地20g/Lペプトン、10g/L酵母エキス、20g/Lグルコース/14mL容試験管に接種し、140rpm、30°Cで24時間振とう培養した。得られた前培養液を100mLYPD10C20g/Lペプトン、10g/L酵母エキス、100g/Lグルコース、45g/L炭酸カルシウム/300mL容三角フラスコに接種し、初期OD600を1もしくは10とし、100rpmもしくは120rpm、30°Cで振とう培養した。培養72時間後に終濃度100g/Lとなるようにグルコース固体を培養液に添加し、さらに144時間まで培養を行った。経時的にサンプリングして0.2μmフィルターでろ過した。各種定量分析は、実施例5に記載の方法に従って行った。なお、データは3反復試行の平均で示した。結果を図6に示す。図6によると、初期OD600=10、120rpmで培養したときに最も高いイソプロパノール生産量が見られ、培養144時間後に最大で18.5g/Lのイソプロパノールが生産された。その際の対糖収率は30.8であった。このことから、振とう速度が速いほど通気量が多いほど、また、初期ODが高いほど、イソプロパノール生産には好ましいことが明らかとなった。実施例9:TMS378株のイソプロパノール生産における添加グルコース濃度の影響イソプロパノール生産に適したTMS378株の培養条件の検討を行った。TMS378株を2mLYPD液体培地20g/Lペプトン、10g/L酵母エキス、20g/Lグルコース/14mL容試験管に接種し、140rpm、30°Cで24時間振とう培養した。得られた前培養液を100mLYPD10C20g/Lペプトン、10g/L酵母エキス、100g/Lグルコース、45g/L炭酸カルシウム/300mL容三角フラスコもしくはYPD5C20g/Lペプトン、10g/L酵母エキス、50g/Lグルコース、45g/L炭酸カルシウム/300mL容三角フラスコに接種し、初期OD600=1、120rpm、30°Cで振とう培養した。YPD10Cで培養を行ったサンプルについては、培養72時間後に終濃度100g/Lとなるようにグルコース固体を添加し、さらに192時間まで培養を行った。また、YPD5Cで培養を行ったサンプルについては、培養48時間おきに3回終濃度50g/Lとなるようにグルコース固体を添加し、さらに192時間まで培養を行った。いずれの条件も最終のグルコース濃度は200g/Lである。経時的にサンプリングして0.2μmフィルターでろ過した。各種定量分析は、実施例5に記載の方法に従って行った。なお、データは3反復試行の平均で示した。結果を図7に示す。図7によると、YPD10Cで培養し、培養72時間後に100g/Lのグルコースを添加した場合は、培養122時間後に最大で19.2g/Lのイソプロパノールが生産された。しかし、それ以降はイソプロパノール生産量の増大は認められず、酢酸が蓄積したACL1、ACLYおよびACS2の組み合わせを過剰発現する株、ACL1、ACLYおよびERG10の組み合わせを過剰発現する株、ACS2およびERG10の組み合わせを過剰発現する株、ACL1、ACLY、ACS2およびERG10の組み合わせを過剰発現する株をそれぞれ構築し、ACL1、ACLY、ACS2、CRC1、ERG10およびYAT1の組み合わせを過剰発現する株TMS378株およびそれぞれの単独遺伝子の過剰発現株との間で、イソプロパノール生産量の比較を行った。組み換え株の構築は実施例6および実施例7と同様の方法を用いて行い、組み込みたい遺伝子DNAを混合し、同時に形質転換を行った。得られた各32クローンについて発酵試験を行い、それぞれの導入遺伝子の組み合わせにおいて平均的なイソプロパノール生産量を示す株を選抜した。各構築株を2mLYPD液体培地20g/Lペプトン、10g/L酵母エキス、20g/Lグルコース/14mL容試験管に接種し、140rpm、30°Cで24時間振とう培養した。得られた前培養液を3mLYPD10C20g/Lペプトン、10g/L酵母エキス、100g/Lグルコース、45g/L炭酸カルシウム/ガラス試験管に接種し、初期OD600=1、100rpm、30°Cで振とう培養した。経時的にサンプリングを行い、高速液体クロマトフラフィーおよびガスクロマトフラフィーGC-2010でイソプロパノール生産量を評価した。なお、データは3反復試行の平均で示した。図8によると、ACS1、ACS2およびERG10のそれぞれ単独の過剰発現により、イソプロパノール生産量が2.2~2.7倍になることが明らかとなった。ACL1、ACLYおよびACS2の組み合わせを過剰発現する株、ならびにACL1、ACLYおよびERG10の組み合わせを過剰発現する株のイソプロパノール生産量は、それぞれACS2およびERG10を単独で過剰発現する株と有意な差は認められなかった。一方、ACS2およびERG10の組み合わせを過剰発現する株ではイソプロパノール生産の飛躍的な向上が認められ、生産量が11.6倍に向上した。また、ACS2およびERG10の組み合わせを過剰発現する株、ACL1、ACLY、ACS2およびERG10の組み合わせを過剰発現する株、TMS378株ACL1、ACLY、ACS2、CRC1、ERG10およびYAT1の組み合わせを過剰発現する株の株間において、イソプロパノール生産量に有意な差は認められなかった。これらの結果より、同時に過剰発現した際にはACL、CRC1およびYAT1の過剰発現がイソプロパノールの生産性向上に与える寄与は小さく、イソプロパノール生産性を向上させるためにはACS2とERG10を同時に過剰発現することが最も重要であることが示された。以上の結果は、酵母によるイソプロパノール高生産のためにはエタノールからアセチルCoAを合成する代謝経路、すなわち酢酸からアセチルCoAを合成する代謝経路に関わる酵素遺伝子の発現または活性を増強することが重要であることを示している。