"インフルエンザA型ウイルスのH1亜型、H2亜型、及びH5亜型からなる一群から選択される少なくとも1つに対して中和活性を有する、抗インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体。インフルエンザA型ウイルス感染から快復した患者の血液中に存在するB細胞に由来する、請求項1に記載の抗インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体。上記インフルエンザA型ウイルスはH1N1亜型を有する、請求項1に記載の抗インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体。以下の軽鎖及び重鎖のポリペプチド配列配列番号1、7、及び12からなる一群から選択される配列を含むCDR1領域と、配列番号2に示す配列を含むCDR2領域と、配列番号3、8、及び13からなる一群から選択される配列を含むCDR3領域とを含む、軽鎖、及び配列番号4、9、及び14からなる一群から選択される配列を含むCDR1領域と、配列番号5、10、及び15からなる一群から選択される配列を含むCDR2領域と、配列番号6、11、16からなる一群から選択される配列を含むCDR3領域とを含む重鎖、を含む、抗インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体、並びにその断片及び機能変異体。以下のモノクローナル抗体、配列番号1に示す配列を含むCDR1領域、配列番号2に示す配列を含むCDR2領域、及び配列番号3に示す配列を含むCDR3領域を含む軽鎖と、配列番号4に示す配列を含むCDR1領域、配列番号5に示す配列を含むCDR2領域、及び配列番号6に示す配列を含むCDR3領域を含む重鎖と、を含むモノクローナル抗体;配列番号7に示す配列を含むCDR1領域、配列番号2に示す配列を含むCDR2領域、及び配列番号8に示す配列を含むCDR3領域を含む軽鎖と、配列番号9に示す配列を含むCDR1領域、配列番号10に示す配列を含むCDR2領域、及び配列番号11に示す配列を含むCDR3領域を含む重鎖と、を含むモノクローナル抗体;及び配列番号12に示す配列を含むCDR1領域、配列番号2に示す配列を含むCDR2領域、及び配列番号13に示す配列を含むCDR3領域を含む軽鎖と、配列番号14に示す配列を含むCDR1領域、配列番号15に示す配列を含むCDR2領域、及び配列番号16に示す配列を含むCDR3領域を含む重鎖と、を含むモノクローナル抗体、からなる一群から選択される、抗インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体、並びにその断片及び機能変異体。配列番号36に示すポリペプチド配列を含む軽鎖と、配列番号37に示すポリペプチド配列を含む重鎖と、を含む、請求項5に記載の抗インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体。上記インフルエンザA型ウイルスのH1亜型及びH5亜型に対し中和活性を有する、請求項6に記載の抗インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体。配列番号40に示すポリペプチド配列を含む軽鎖と、配列番号41に示すポリペプチド配列を含む重鎖と、を含む請求項5に記載の抗インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体。上記インフルエンザA型ウイルスのH1亜型、H2亜型、及びH5亜型に対し中和活性を有する、請求項8に記載の抗インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体。配列番号44に示すポリペプチド配列を含む軽鎖と、配列番号45に示すポリペプチド配列を含む重鎖と、を含む、請求項5に記載の抗インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体。上記インフルエンザA型ウイルスのH1亜型に対し中和活性を有する、請求項10に記載の抗インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体。以下の軽鎖及び重鎖のポリヌクレオチド配列配列番号17、23、及び28からなる一群から選択される配列を含むCDR1領域と、配列番号18または29に示す配列を含むCDR2領域と、配列番号19、24、及び30からなる一群から選択される配列を含むCDR3領域と、を含む、軽鎖、及び配列番号20、25、及び31からなる一群から選択される配列を含むCDR1領域と、配列番号21、26、及び32からなる一群から選択される配列を含むCDR2領域と、配列番号22、27、33からなる一群から選択される配列を含むCDR3領域と、を含む、重鎖、を含む、抗インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体、並びにその断片及び機能変異体。以下のモノクローナル抗体、配列番号17に示す配列を含むCDR1領域、配列番号18に示す配列を含むCDR2領域、及び配列番号19に示す配列を含むCDR3領域を含む軽鎖と、配列番号20に示す配列を含むCDR1領域、配列番号21に示す配列を含むCDR2領域、及び配列番号22に示す配列を含むCDR3領域を含む重鎖と、を含む、モノクローナル抗体;配列番号23に示す配列を含むCDR1領域、配列番号18に示す配列を含むCDR2領域、及び配列番号24に示す配列を含むCDR3領域を含む軽鎖と、配列番号25に示す配列を含むCDR1領域、配列番号26に示す配列を含むCDR2領域、及び配列番号27に示す配列を含むCDR3領域を含む重鎖と、を含む、モノクローナル抗体;及び配列番号28に示す配列を含むCDR1領域、配列番号29に示す配列を含むCDR2領域、及び配列番号30に示す配列を含むCDR3領域を含む軽鎖と、配列番号31に示す配列を含むCDR1領域、配列番号32に示す配列を含むCDR2領域、及び配列番号33に示す配列を含むCDR3領域を含む重鎖と、を含む、モノクローナル抗体、からなる一群から選択される、抗インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体、並びにその断片及び機能変異体。配列番号34に示すポリヌクレオチド配列を含む軽鎖と、配列番号35に示すポリヌクレオチド配列を含む重鎖と、を含む、請求項13に記載の抗インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体。インフルエンザA型ウイルスのH1亜型及びH5亜型に対し中和活性を有する、請求項14に記載の抗インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体。配列番号38に示すポリヌクレオチド配列を含む軽鎖と、配列番号39に示すポリヌクレオチド配列を含む重鎖と、を含む、請求項13に記載の抗インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体。上記インフルエンザA型ウイルスのH1亜型、H2亜型、及びH5亜型に対し中和活性を有する、請求項16に記載の抗インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体。配列番号42に示すポリヌクレオチド配列を含む軽鎖と、配列番号43に示すポリヌクレオチド配列を含む重鎖と、を含む、請求項13に記載の抗インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体。上記インフルエンザA型ウイルスのH1亜型に対し中和活性を有する、請求項18に記載の抗インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体。請求項1、4、及び5の何れか1項に記載の抗インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体をエンコードする、単離核酸分子。請求項20に記載の単離核酸分子が挿入された、発現ベクター。請求項21に記載の発現ベクターを宿主細胞にトランスフェクトした、抗インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体作製用の細胞系。上記宿主細胞が、CHO細胞、F2N細胞、及びHEK293細胞からなる一群から選択される1つである、請求項22に記載の抗インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体作製用の細胞系。インフルエンザA型ウイルス感染から快復した患者から、インフルエンザA型ウイルスに対して中和活性を有する抗体をスクリーニングする方法であって、1患者がインフルエンザA型ウイルス感染から全快したか否かを検査し、被検査患者から、血液中のインフルエンザA型ウイルス反応が陰性の患者のみをスクリーニングする工程と、2上記工程1でスクリーニングされた、インフルエンザA型ウイルスから全快した患者の血液を採取する工程と、3上記工程2で採取した血液からB細胞を単離する工程と、4上記工程3で単離したB細胞から、HA結合性の抗体を生成するB細胞のみをスクリーニングする工程と、5上記工程4でスクリーニングした上記B細胞からRNAを抽出する工程と、6上記工程5において抽出した上記RNAから抗体遺伝子を増幅する工程と、7上記工程6で増幅した上記抗体遺伝子を発現ベクターにクローニングする工程と、8上記工程7で上記抗体遺伝子のクローニングした上記発現ベクターを宿主細胞にトランスフェクトする工程と、9上記工程8において上記発現ベクターをトランスフェクトした上記宿主細胞について、上記HA結合性の抗体を生成するか否かを確認する工程と、10上記工程9の確認結果に基づいてスクリーンニングした宿主細胞を培養する工程と、11上記工程10の培養後、上記宿主細胞から、上記インフルエンザA型ウイルスのHAへ結合する抗体を精製する工程と、12上記工程11で精製した上記抗体について、インフルエンザA型ウイルスに対して中和活性を有するか否かを確認する工程と、13上記工程12においてインフルエンザA型ウイルスに対して中和活性を有することが再度確認された抗体をスクリーニングする工程と、を含む方法。請求項1、4、5、12、及び13の何れか1項に記載の抗インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体を含む、組成物。インフルエンザA型ウイルスによって発病する疾患の予防及び治療用の組成物であって、請求項1、4、5、12、及び13の何れか1項に記載の抗インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体を含む、組成物。インフルエンザA型ウイルスの診断用の組成物であって、結合体を含み、この結合体は、請求項1、4、5、12、及び13の何れか1項に記載の抗インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体と会合する標識を含む、組成物。上記標識が、酵素と、発光酵素と、放射性同位体とからなる一群から選択される1つであることを特徴とする請求項27に記載の組成物。インフルエンザA型ウイルスにより発病する疾患の治療方法であって、インフルエンザA型ウイルスにより発病する疾患を罹患している対象に請求項1、4、5、12、及び13の何れか1項に記載のインフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体を投与する工程を含む治療方法。上記インフルエンザA型ウイルスが、H1亜型、H2亜型、及びH5亜型からなる一群から選択される1つまたは複数の亜型を含む、請求項29に記載の治療方法。インフルエンザA型ウイルスにより発病する疾患を予防する方法であって、請求項1、4、5、12、及び13の何れか1項に記載のインフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体を対象に投与する工程を含む方法。患者のインフルエンザA型ウイルス感染を診断する方法であって、1請求項1、4、5、12、及び13の何れか1項に記載の抗インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体にサンプルを接触させる工程と、2上記抗インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体と上記サンプルとの間の反応を検出する工程と、を含む、方法。患者のインフルエンザA型ウイルス感染を診断する方法であって、1請求項27に記載のインフルエンザA型ウイルスの診断用の組成物にサンプルを接触させる工程と、2上記抗インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体と上記サンプルとの間の反応を検出する工程と、を含む、方法。上記インフルエンザA型ウイルスは、H1亜型、H2亜型、及びH5亜型からなる一群から選択される1つまたは複数の亜型を含む、請求項32または33に記載の方法。1請求項1、4、5、12、及び13の何れか1項に記載の抗インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体と、2容器と、を備えた、インフルエンザA型ウイルス診断用キット。1請求項27に記載のインフルエンザA型ウイルス感染の検出用の組成物と、2容器と、を備えた、インフルエンザA型ウイルス感染の診断用キット。上記インフルエンザA型ウイルスは、H1亜型、H2亜型、及びH5亜型からなる一群から選択される1つまたは複数の亜型を含むことを特徴とする請求項35または36に記載の診断用キット。本発明の目的は、ヒトB細胞由来のヒトモノクローナル抗体であって、インフルエンザA型ウイルスに対して中和活性を有するヒトモノクローナル抗体を提供することである。本発明の他の目的は、上記ヒトモノクローナル抗体をエンコードする単離核酸分子を提供することである。本発明の更に他の目的は、上記単離核酸分子が挿入された発現ベクターを提供することである。本発明の更に他の目的は、上記発現ベクターをトランスフェクトした、抗体作製用の細胞系を提供することである。本発明の更に他の目的は、ヒトモノクローナル抗体をスクリーニングする方法を提供することである。本発明の更に他の目的は、上記ヒトモノクローナル抗体を含む組成物を提供することである。本発明の更に他の目的は、上記ヒトモノクローナル抗体を使用してインフルエンザA型ウイルスによって発病する疾患を治療する方法を提供することである。本発明の更に他の目的は、上記ヒトモノクローナル抗体を使用してインフルエンザA型ウイルスによって発病する疾患を予防する方法を提供することである。本発明の更に他の目的は、上記ヒトモノクローナル抗体を使用してインフルエンザA型ウイルス感染を診断する診断方法を提供することである。本発明の更に他の目的は、インフルエンザA型ウイルスの診断キットであって、上記ヒトモノクローナル抗体を含む診断キットを提供することである。上記課題を解決するために、本発明は、インフルエンザA型ウイルスのH1亜型、H2亜型、及びH5亜型からなる一群から選択される少なくとも1つに対して中和活性を有する抗インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体を提供する。また、本発明は、上記抗インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体をエンコードする単離核酸分子を提供する。また、本発明は、上記単離核酸分子が挿入された発現ベクターを提供する。また、本発明は、上記発現ベクターをトランスフェクトした、抗体作製用の細胞系を提供する。また、本発明は、ヒトモノクローナル抗体をスクリーニングするスクリーニング方法を提供する。また、本発明は、上記ヒトモノクローナル抗体を含む組成物を提供する。また、本発明は、インフルエンザA型ウイルスによって発病する疾患の予防及び治療用の組成物であって、上記ヒトモノクローナル抗体を含む組成物を提供する。また、本発明は、インフルエンザA型ウイルス感染の診断用の組成物であって、上記ヒトモノクローナル抗体を含む組成物を提供する。また、本発明は、上記ヒトモノクローナル抗体を使用してインフルエンザA型ウイルスによって発病する疾患を治療する治療方法を提供する。また、本発明は、上記ヒトモノクローナル抗体を使用してインフルエンザA型ウイルスによって発病する疾患を予防する予防方法を提供する。また、本発明は、上記ヒトモノクローナル抗体を使用してインフルエンザA型ウイルス感染を診断する診断方法を提供する。また、本発明は、インフルエンザA型ウイルスの診断キットであって、上記ヒトモノクローナル抗体を含む診断キットを提供する。本発明に係る抗インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体は、インフルエンザA型ウイルスのH1亜型、H2亜型、及びH5亜型からなる一群から選択される少なくとも1つに対して結合活性と中和活性とを有している。よって、本発明に係る抗インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体は、上記インフルエンザA型ウイルスによって発病する疾患の予防及び治療に有用であり、上記インフルエンザA型ウイルスの感染診断にも有用である。以下、本明細書において使用する用語を下記のように定義する。インフルエンザA型ウイルスは、エンベロープを持つマイナス鎖のRNAリボ核酸ウイルスであって、オルトミクソウイルスOrthomyxoviridae科に属するRNAウイルスを指す。インフルエンザウイルスは8分節から構成される一本鎖RNAを持ち、A型、B型、及びC型の何れかに分類される。各型のインフルエンザウイルスは、HAヘマグルチニン及びNAノイラミニダーゼといった主要な表面タンパク質に応じて、更に亜型に分類される。インフルエンザA型ウイルスの表面タンパク質については、現在までに16種類のHAと9種類のNAとが知られている。本明細書のH1亜型は、インフルエンザA型ウイルスのH1N1亜型、H1N2亜型、H1N3亜型、H1N4亜型、H1N5亜型、H1N6亜型、H1N7亜型、H1N8亜型、及びH1N9亜型を含むものである。本明細書のH2亜型は、インフルエンザA型ウイルスのH2N1亜型、H2N2亜型、H2N3亜型、H2N4亜型、H2N5亜型、H2N6亜型、H2N7亜型、H2N8亜型、及びH2N9亜型を含むものである。本明細書のH5亜型は、インフルエンザA型ウイルスのH5N1亜型、H5N2亜型、H5N3亜型、H5N4亜型、H5N5亜型、H5N6亜型、H5N7亜型、H5N8亜型、及びH5N9亜型を含むものである。ヘマグルチニン以下、HAと称するは、インフルエンザウイルスのエンベロープ糖タンパク質を意味する。HAは、インフルエンザウイルスの宿主細胞への吸着及び侵入を可能にする。HAの亜型は16種類が知られている。本明細書の快復または全快復患者は、インフルエンザA型ウイルスの感染によってインフルエンザA型ウイルスに対し陽性反応を示し、一定時間後、血液中でインフルエンザA型ウイルスに対し陰性反応を示した患者であり、上記陰性反応は上記インフルエンザA型ウイルス感染からの快復を示唆している。以下、本発明を詳細に説明する。本願発明者らは、インフルエンザA型ウイルス感染から快復後の患者から採取した血液中の末梢血単核細胞PBMCを単離した。そして、単離したPBMCからモノクローナル抗体作製用のB細胞をスクリーニングした。スクリーニング後の上記B細胞から、モノクローナル抗体を作製するための遺伝情報をRT-PCR方法により取得し、pcDNAベクターへ挿入した。抗体の予備生成とこの抗体のHAに対する結合活性とを確認するために、上記pcDNAベクターをCHO細胞系にトランスフェクトした。その結果、全部で82種類の抗体がスクリーニングされた。続いて、HAに対する結合親和力をより正確に測定するために、上記pcDNAベクターに挿入された各抗体をヒトF2N細胞にトランスフェクトし、トランスフェクト後、単量体HAと三量体HAとを抗原とするHA-ELISA法を使用して、上記ヒトF2N細胞が生成する抗体の比較分析を行った。これにより、上記単量体HAよりも高い反応度で上記三量体HAと反応した35種類の抗体を選択した。次に、上記pcDNAベクターにおけるこれら35種類の抗体遺伝子をMarEx発現ベクターに挿入した。大量の抗体を生成するように、このMarEx発現ベクターをF2N細胞にトランスフェクトした。トランスフェクト後、F2N細胞により生成される抗体を使用して、マイクロ中和試験以下、MN試験と称する及び血球凝集抑制試験以下、HI試験と称するを行い、多様のインフルエンザウイルスに対する中和活性を測定した。その結果、上記抗体のうちの多数が、多様なインフルエンザウイルスに対して高い中和活性または低い中和活性を示した。しかし、上記HI試験では、上記抗体の全てが陰性反応を示した。上記MN試験によって、多様なウイルスに対する中和活性を示す3種類のモノクローナル抗体CT104抗体、CT120抗体、及びCT123抗体が最終的に選択された。スクリーニングにより選択した上記3種類のモノクローナル抗体のうち、CT104抗体がHI亜型及びH5亜型に対し中和活性を有し、CT120抗体がHI亜型、H2亜型、及びH5亜型に対し中和活性を有し、CT123抗体が上記H1亜型に対し中和活性を有することが見出された表1参照。また、上記H1亜型及び上記H5亜型を使用した動物マウス生存実験では、上記CT104抗体並びに上記CT120抗体がH5N1ウイルス感染に対して優れた予防効果及び治療効果を示し、上記3種類のうち全抗体が、新型H1N1ウイルス感染及び季節性H1N1ウイルス感染に対して優れた予防効果を示した図6参照。また、上記H1亜型を使用した他の動物フェレット実験では、上記CT120抗体がH1N1ウイルスA/California/04/09感染に対して優れた治療効果を示した図7及び図8参照。上記の結果に基づいて、本願発明者らは、インフルエンザA型ウイルス感染を予防する中和性のモノクローナル抗体である本発明を完成させた。したがって、本発明は、インフルエンザA型ウイルスのH1亜型、H2亜型、及びH5亜型に対する中和活性を有するモノクローナル抗体を提供する。本発明では、上記モノクローナル抗体が、インフルエンザA型ウイルスの表面上のHAと結合することが好ましい。また、上記モノクローナル抗体が、インフルエンザA型ウイルスのH1亜型の感染から快復した患者の血液中に存在するB細胞に由来することが好ましい。本発明では、上記インフルエンザA型ウイルスがインフルエンザA型ウイルスのH1亜型であることが好ましく、上記インフルエンザA型ウイルスのH1亜型は、A/Texas/05/2009-RG15と、A/NewYork/18/2009-RG15と、A/SolomonIslands/2006と、A/Ohio/83とからなる一群から選択される少なくとも1つである。また、上記インフルエンザA型ウイルスは、インフルエンザA型ウイルスのH2N2亜型であることが好ましく、上記インフルエンザA型ウイルスのH2N2亜型はA/AnnArbor/6/60caである。さらに、上記インフルエンザA型ウイルスは、H5N1亜型であることが好ましく、上記インフルエンザA型ウイルスのH5N1亜型は、A/Vietnam/1203/04及びA/Anhui/1/05から選択される1つである。本発明では、上記モノクローナル抗体は、インフルエンザA型ウイルスのH3N2亜型に対する中和活性を有していない。また、本発明は、次の軽鎖及び重鎖のポリペプチド配列を含む抗インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体、並びに、その断片及び機能変異体を提供し:軽鎖は、配列番号1、7、及び12からなる一群から選択される配列を含むCDR1領域と、配列番号2に示す配列を含むCDR2領域と、配列番号3、8、及び13からなる一群から選択される配列を含むCDR3領域とを含み;重鎖は、配列番号4、9、及び14からなる一群から選択される配列を含むCDR1領域と、配列番号5、10、及び15からなる一群から選択される配列を含むCDR2領域と、配列番号6、11、及び16からなる一群から選択される配列を含むCDR3領域と、を含む。また、本発明は、以下のモノクローナル抗体からなる一群から選択される抗インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体、並びにその断片及びその機能変異体を提供する:配列番号1に示す配列を含むCDR1領域、配列番号2に示す配列を含むCDR2領域、及び配列番号3に示す配列を含むCDR3領域を含む軽鎖と、配列番号4に示す配列を含むCDR1領域、配列番号5に示す配列を含むCDR2領域、及び配列番号6に示す配列を含むCDR3領域を含む重鎖と、を含むモノクローナル抗体;配列番号7に示す配列を含むCDR1領域、配列番号2に示す配列を含むCDR2領域、及び配列番号8に示す配列を含むCDR3領域を含む軽鎖と、ii ́配列番号9に示す配列を含むCDR1領域、配列番号10に示す配列を含むCDR2領域、及び配列番号11に示す配列を含むCDR3領域を含む重鎖と、を含むモノクローナル抗体;及び配列番号12に示す配列を含むCDR1領域、配列番号2に示す配列を含むCDR2領域、及び配列番号13に示す配列を含むCDR3領域を含む軽鎖と、配列番号14に示す配列を含むCDR1領域、配列番号15に示す配列を含むCDR2領域、及び配列番号16に示す配列を含むCDR3領域を含む重鎖と、を含むモノクローナル抗体。本発明では、上記モノクローナル抗体が、配列番号36に示すポリペプチド配列を含む軽鎖と配列番号37に示すポリペプチド配列を含む重鎖とを含むことが好ましい。また、上記モノクローナル抗体は、上記インフルエンザA型ウイルスのH1亜型及びH5亜型に対し中和活性を有し、上記インフルエンザA型ウイルスのH3亜型に対し中和活性を有していないことが好ましい。上記インフルエンザA型ウイルスのH1亜型は、H1N1亜型と、H1N2亜型と、H1N3亜型と、H1N4亜型と、H1N5亜型と、H1N6亜型と、H1N7亜型と、H1N8亜型と、H1N9亜型とを含み、上記インフルエンザA型ウイルスのH5亜型は、H5N1亜型と、H5N2亜型と、H5N3亜型と、H5N4亜型と、H5N5亜型と、H5N6亜型と、H5N7亜型と、H5N8亜型と、H5N9亜型とを含む。本発明では、上記モノクローナル抗体が、配列番号40に示すポリペプチド配列を含む軽鎖と配列番号41に示すポリペプチド配列を含む重鎖とを含むことが好ましい。また、上記モノクローナル抗体は、上記インフルエンザA型ウイルスのH1亜型と、H2亜型と、H5亜型とに対し中和活性を有し、上記インフルエンザA型ウイルスのH3亜型に対し中和活性を有していないことが好ましい。上記インフルエンザA型ウイルスのH1亜型は、H1N1亜型と、H1N2亜型と、H1N3亜型と、H1N4亜型と、H1N5亜型と、H1N6亜型と、H1N7亜型と、H1N8亜型と、H1N9亜型とを含み、上記インフルエンザA型ウイルスのH2亜型は、H2N1亜型と、H2N2亜型と、H2N3亜型と、H2N4亜型と、H2N5亜型と、H2N6亜型と、H2N7亜型と、H2N8亜型と、H2N9亜型とを含み、上記インフルエンザA型ウイルスのH5亜型は、H5N1亜型と、H5N2亜型と、H5N3亜型と、H5N4亜型と、H5N5亜型と、H5N6亜型と、H5N7亜型と、H5N8亜型と、H5N9亜型とを含む。本発明では、上記モノクローナル抗体が、配列番号44に示すポリペプチド配列を含む軽鎖と配列番号45に示すポリペプチド配列を含む重鎖とを含むことが好ましい。また、上記モノクローナル抗体が、上記インフルエンザA型ウイルスのH1亜型に対し中和活性を有し、上記インフルエンザA型ウイルスのH3亜型に対し中和活性を有していないことが好ましい。上記インフルエンザA型ウイルスのH1亜型は、H1N1亜型と、H1N2亜型と、H1N3亜型と、H1N4亜型と、H1N5亜型と、H1N6亜型と、H1N7亜型と、H1N8亜型と、H1N9亜型とを含む。本発明のインフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体の断片は、上記インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体全体ではなく、その一部である。上記断片は、上記インフルエンザA型ウイルスのHAへ結合する能力を有し、本発明の抗インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体と競合して上記HAに結合する全ての断片を含むものとする。さらに、本発明は、本発明のインフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体の機能変異体を含む。上記インフルエンザA型ウイルスのH1亜型、H2亜型、及びH5亜型に特異的に結合する本発明のインフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体とその断片とが上記機能変異体に含まれている場合、上記機能変異体を本発明のモノクローナル抗体の機能変異体と見なす。特に、機能変異体が上記インフルエンザA型ウイルスのH1亜型、H2亜型、及びH3亜型またはその断片に結合でき、これらインフルエンザA型ウイルスの亜型またはその断片に対する中和活性を有している場合、上記機能変異体を本発明の機能変異体と見なす。機能変異体としては、一次構造配列が実質的に類似するが、親抗体である上記抗インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体には見られない、化学的若しくは生化学的な、invitroまたはinvivoの修飾を含む誘導体が挙げられるが、これに限定されない。このような修飾としては、例えば、アセチル化、アシル化、ヌクレオチドまたはヌクレオチド誘導体の共有結合化、脂質または脂質誘導体の共有結合化、架橋、ジスルフィド結合、グリコシル化、水酸化、メチル化、酸化、PEG化pegylation、タンパク質分解処理、リン酸化などが挙げられる。また、機能変異体は、親抗体である上記抗インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体のアミノ酸配列と比較して、1つ以上のアミノ酸の置換、挿入、欠損、またはこれらの組合せを含むアミノ酸配列を含むモノクローナル抗体であってもよい。さらに、機能変異体は、アミノ末端側とカルボキシル末端側との一方または両方のアミノ酸配列が切断されたものでもよい。本発明の機能変異体は、親抗体である上記抗インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体のアミノ酸配列と同一の結合親和力または異なる結合親和力親抗体である上記抗インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体のアミノ酸配列よりも高い結合親和力または低い結合親和力を有していてもよく、上記インフルエンザA型ウイルスのH1亜型、H2亜型、及びH5亜型またはそれらの断片に結合し得る。例えば、本発明の機能変異体では、上記インフルエンザA型ウイルスのH1亜型、H2亜型、及びH5亜型またはそれらの断片に対する結合親和力が、親結合分子と比較して増大または減少したものであってよい。好ましくは、様々な領域フレームワーク領域、超可変領域、特に上記CDR3領域が挙げられるが、これに限定されないのアミノ酸配列は修飾されている。一般的に、上記軽鎖領域または上記重鎖領域は、3つのCDR領域を含む3つの超可変領域と、より保存性の高い領域所謂フレームワーク領域FRとを含む。上記超可変領域は、CDRのアミノ酸残基と超可変ループのアミノ酸残基とを含む。本発明の範囲に含まれる機能変異体では、上述の親モノクローナル抗体に対するアミノ酸配列の相同性が少なくとも約50~約99であり、好ましくは少なくとも約60~約99であり、より好ましくは少なくとも約80~約99であり、さらに好ましくは少なくとも約90~約99であり、特に好ましくは少なくとも約95~約99であり、さらに好ましくは少なくとも約97~約99である。Gap法またはBestfit等の当業者に公知のコンピュータアルゴリズムを使用して、アミノ酸配列同士を比較できるように最適に揃えて、同様または同一のアミノ酸残基を決定することができる。機能変異体は、PCR法、オリゴヌクレオチド指定突然変異誘発法、及び部位特異的突然変異誘発法などの当業者に公知の分子生物学法または有機組織法によって上記親モノクローナル抗体またはその一部を改変することにより得られる。また、本発明は、次の軽鎖及び重鎖を含む抗インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体、並びにその断片及び機能変異体を提供し:上記軽鎖は、配列番号17、23、及び28からなる一群から選択される配列を含むCDR1領域と、配列番号18または29に示す配列を含むCDR2領域と、配列番号19、24、及び30からなる一群から選択される配列を含むCDR3領域と、を含み;上記重鎖は、配列番号20、25、及び31からなる一群から選択される配列を含むCDR1領域と、配列番号21、26、及び32からなる一群から選択される配列を含むCDR2領域と、配列番号22、27、及び33からなる一群から選択される配列を含むCDR3領域と、を含む。また、本発明は、以下のモノクローナル抗体からなる一群から選択される抗インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体、並びにその断片及び機能変異体を提供する:配列番号17に示す配列を含むCDR1領域、配列番号18に示す配列を含むCDR2領域、及び配列番号19に示す配列を含むCDR3領域を含む軽鎖と、配列番号20に示す配列を含むCDR1領域、配列番号21に示す配列を含むCDR2領域、及び配列番号22に示す配列を含むCDR3領域を含む重鎖と、を含むモノクローナル抗体;配列番号23に示す配列を含むCDR1領域、配列番号18に示す配列を含むCDR2領域、及び配列番号24に示す配列を含むCDR3領域を含む軽鎖と、配列番号25に示す配列を含むCDR1領域、配列番号26に示す配列を含むCDR2領域、及び配列番号27に示す配列を含むCDR3領域を含む重鎖と、を含むモノクローナル抗体;及び配列番号28に示す配列を含むCDR1領域、配列番号29に示す配列を含むCDR2領域、及び配列番号30に示す配列を含むCDR3領域を含む軽鎖と、配列番号31に示す配列を含むCDR1領域、配列番号32に示す配列を含むCDR2領域、及び配列番号33に示す配列を含むCDR3領域を含む重鎖と、を含むモノクローナル抗体。本発明では、上記モノクローナル抗体が、配列番号34に示すポリヌクレオチド配列を含む軽鎖と配列番号35に示すポリヌクレオチド配列を含む重鎖とを含むことが好ましい。また、上記モノクローナル抗体が、上記インフルエンザA型ウイルスのH1亜型及びH5亜型に対し中和活性を有し、上記インフルエンザA型ウイルスのH3N2亜型に対し中和活性を有していないことが好ましい。上記インフルエンザA型ウイルスのH1亜型は、H1N1亜型と、H1N2亜型と、H1N3亜型と、H1N4亜型と、H1N5亜型と、H1N6亜型と、H1N7亜型と、H1N8亜型と、H1N9亜型と含み、上記インフルエンザA型ウイルスのH5亜型は、H5N1亜型と、H5N2亜型と、H5N3亜型と、H5N4亜型と、H5N5亜型と、H5N6亜型と、H5N7亜型と、H5N8亜型と、H5N9亜型とを含む。本発明によれば、上記モノクローナル抗体が、配列番号38に示すポリヌクレオチド配列を含む軽鎖と配列番号39に示すポリヌクレオチド配列を含む重鎖とを含むことが好ましい。また、上記モノクローナル抗体が、上記インフルエンザA型ウイルスのH1亜型、H2亜型、及びH5亜型に対し中和活性を有し、上記インフルエンザA型ウイルスのH3N2亜型に対し中和活性を有していないことが好ましい。上記インフルエンザA型ウイルスのH1亜型は、H1N1亜型と、H1N2亜型と、H1N3亜型と、H1N4亜型と、H1N5亜型と、H1N6亜型と、H1N7亜型と、H1N8亜型と、H1N9亜型とを含み、上記インフルエンザA型ウイルスのH2亜型は、H2N1亜型と、H2N2亜型と、H2N3亜型と、H2N4亜型と、H2N5亜型と、H2N6亜型と、H2N7亜型と、H2N8亜型と、H2N9亜型とを含み、上記インフルエンザA型ウイルスのH5亜型は、H5N1亜型と、H5N2亜型と、H5N3亜型と、H5N4亜型と、H5N5亜型と、H5N6亜型と、H5N7亜型と、H5N8亜型と、H5N9亜型とを含む。本発明によれば、上記モノクローナル抗体が、配列番号42に示すポリヌクレオチド配列を含む軽鎖と配列番号43に示すポリヌクレオチド配列を含む重鎖とを含むことが好ましい。また、上記モノクローナル抗体が、上記インフルエンザA型ウイルスのH1亜型に対し中和活性を有し、上記インフルエンザA型ウイルスのH3亜型に対し中和活性を有していないことが好ましい。上記インフルエンザA型ウイルスのH1亜型は、H1N1亜型と、H1N2亜型と、H1N3亜型と、H1N4亜型と、H1N5亜型と、H1N6亜型と、H1N7亜型と、H1N8亜型と、H1N9亜型とを含む。また、本発明は、上記抗インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体をエンコードする、単離した核酸分子を提供する。本発明の上記核酸分子は、本発明の抗体のアミノ酸配列を当業者に公知の方法に従ってポリヌクレオチド配列へ翻訳して得られる全ての核酸分子を含む。したがって、オープンリーディングフレームopenreadingframesORFsを含む多様なポリヌクレオチド配列を調製することができ、これらポリヌクレオチド配列を本発明の核酸分子の範囲に含めることができる。また、本発明は、上記核酸分子が挿入された発現ベクターを提供する。上記発現ベクターは、MarEx発現ベクターCelltrion社、韓国、広く市場に流通しているpCDNAベクター、F、R1、RP1、Col、pBR322、ToL、Tiベクター等のベクターと;コスミドと;ラムダ、ラムドイド、M13、Mu、P1、P22、Qμ、T-even、T2、T4、T7等のファージと;植物ウイルスとからなる一群から選択される1つに由来することが好ましいが、これに限定されない。本発明では、当業者に公知の多様な発現ベクターのうち任意の発現ベクターを使用でき、発現ベクターの選択は、選択された宿主細胞の種類に応じたもので実施される。上記発現ベクターの宿主細部への導入は、リン酸カルシウムトランスフェクション法、ウイルス感染法、DEAE-デキストランを介したトランスフェクション法、リポフェクタミントランスフェクション法、または電気穿孔法によって実現できるが、これに限定されない。当業者であれば、使用する発現ベクター及び宿主細胞に好適な導入方法を選択し、使用することができる。好ましくは、上記発現ベクターが1つまたは複数の選択マーカーを含むが、これに限定されない。よって、選択マーカーを含まないベクターを使用してもよい。上記選択マーカーの選択は選択された宿主細胞に応じたものでもよいが、このような選択マーカーの選択は当業者に周知であり、本発明にとって重要ではない。本発明の核酸分子の精製を容易にするために、上記発現ベクターに標識配列を挿入してもよい。例えば、上記標識配列として、ヘクサ-ヒスチジン標識、ヘマグルチニン標識、myc標識、またはFLAG標識が挙げられるが、これに限定されない。本発明においては、精製を容易にするための当業者に公知の任意の標識を使用してもよい。また、本発明は、上記発現ベクターをトランスフェクトした、抗インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体作製用の細胞系を提供する。本発明では、上記細胞として、哺乳類細胞、植物細胞、昆虫細胞、真菌細胞、または細菌発生細胞が挙げられるが、これに限定されない。上記細胞が哺乳類細胞である場合、CHO細胞と、F2細胞と、CSO細胞と、BHK細胞と、Bowesmelanoma細胞と、HeLa細胞と、911細胞と、AT1080細胞と、A549細胞と、HEK293細胞と、HEK293T細胞とからなる一群から選択される1つを宿主細胞として使用するのが好ましいが、これに限定されない。また、哺乳類宿主細胞として使用可能な当業者に公知の任意の細胞を本発明に使用してもよい。また、本発明は、インフルエンザA型ウイルス感染から快復した患者から、インフルエンザA型ウイルスに対して中和活性を有する抗体をスクリーニングする方法であって、以下の工程1~12を含む方法を提供する:1患者がインフルエンザA型ウイルス感染から全快したか否かを検査して、且つ、血液中のインフルエンザA型ウイルス反応が陰性を示す患者を選別する工程と、2上記工程1で選別された、インフルエンザA型ウイルス感染から全快している患者の血液を採取する工程と、3上記工程2で採取した血液中のB細胞を単離する工程と、4上記工程3で単離したB細胞のうち、HA結合性の抗体を生成するB細胞のみを選別する工程と、5上記工程4で選別したB細胞からRNAを抽出する工程と、6上記工程5において抽出したRNAから抗体遺伝子を増幅する工程と、7上記工程6で増幅した抗体遺伝子を発現ベクター内にクローニングする工程と、8上記工程7で抗体遺伝子のクローニングを行った発現ベクターを宿主細胞にトランスフェクトする工程と、9上記工程8において上記発現ベクターをトランスフェクトした宿主細胞が上記HA結合性の抗体を生成するか否かを確認する工程と、10上記工程9の確認結果に基づいて選別した宿主細胞を培養する工程と、11上記工程10の培養後の上記宿主細胞から、上記インフルエンザA型ウイルスのHAに結合している抗体を精製する工程と、12上記工程11で精製した上記抗体がインフルエンザA型ウイルスに対して中和活性を有するか否かを再度確認する工程と、13上記工程12においてインフルエンザA型ウイルスに対して中和活性を有することが再度確認された抗体を再度選別する工程。また、本発明は、上記抗インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体を含む組成物を提供する。本発明の上記組成物は、上記抗インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体に加えて、薬学的に許容可能な添加剤を含んでよい。なお、薬学的に許容可能な添加剤は当業者に周知である。また、本発明は、インフルエンザA型ウイルスによって発病する疾患の予防及び治療用の組成物であって、上記抗インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体を含む組成物を提供する。本発明の組成物は、上記抗インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体に加えて、薬学的に許容可能な添加剤を含んでよい。なお、薬学的に許容可能な添加剤は当業者に周知である。また、本発明の疾患の予防及び治療用の組成物は、少なくとも5つの他のA型インフルエンザ治療剤を含んでもよい。さらに、本発明の疾患の予防及び治療用の組成物は、インフルエンザA型ウイルスのH1亜型、H2亜型、及びH5亜型またはそれらの断片に結合する多様なモノクローナル抗体を含んでもよく、上記モノクローナル抗体は中和活性の相乗効果を発揮する。また、本発明の疾患の予防及び治療用の組成物は、1つまたは複数の他の治療剤または診断用剤を更に含んでもよい。上記治療剤としては、抗ウイルス薬が挙げられるが、これに限定されない。このような抗ウイルス薬としては、抗体、小分子、有機化合物または無機化合物、酵素、ポリヌクレオチド配列、及び抗ウイルス配列等が挙げられる。また、本発明の疾患の予防及び治療用の組成物は、製造過程及び保存過程において無菌且つ安定状態であることが求められる。また、本発明の疾患の予防及び治療用の組成物は、出荷前または出荷時に薬学的に許容可能な適当な添加剤中で再構成されるように、粉末形態であってもよい。本発明の疾患の予防及び治療用の組成物が、無菌状態の注射剤を調製できるような粉末形態の場合、好適な調整方法としては、予め除菌した溶液から活性成分の粉末と他の任意の所望の含有物を作製する真空乾燥法と凍結乾燥法とが挙げられる。また、本発明の組成物は溶解状態であってもよく、適当な薬学的に許容可能な添加剤を出荷前または出荷時に添加及び/または混合して、単位投与量の注射可能な形態を提供してもよい。好ましくは、本発明において使用する上記薬学的に許容可能な添加剤は高薬物濃度に好適であり、適切な流動性を保持できるものであり、必要に応じて、吸収を遅らせられるものである。上記疾患の予防及び治療用の組成物の最適な投与経路は、上記組成物内の活性分子の物理的機械的性質、臨床的症状の緊急性、及び上記活性分子の血漿濃度と所望の治療効果との関係等の幾つかの要因に影響される。例えば、本発明のモノクローナル抗体を、放出制御製剤等の上記モノクローナル抗体の急速な放出を防ぐ担体と共に調整してもよく、上記担体としてはインプラント、経皮貼布、及びマイクロカプセル封入送達系microencapsulateddeliverysystemsが挙げられる。また、エチレン酢酸ビニール、ポリ無水物、ポリグリコール酸、コラーゲン、ポリオルトエステル、及びポリ乳酸などの生体分解性の生体適合性ポリマーを本発明に使用してもよい。さらに、上記モノクローナル抗体は、上記モノクローナル抗体の不活性化を防止する材料または化合物によってコーティングされてもよいし、上記モノクローナル抗体の不活性化を防止する材料または化合物と共に投与されてもよい。例えば、上記モノクローナル抗体をリポソームまたは希釈剤などの適当な担体と一緒に投与してもよい。本発明の疾患の予防用及び治療用の組成物の投与経路は、経口投与と非経口的投与とに分類することができる。好適な投与経路は静脈内投与法であるが、これに限定されない。経口投与用の剤形としては、錠剤状、トローチ剤状、薬用キャンディ状、水性懸濁液状または油性懸濁液状、分散性粉末状または分散性顆粒状、硬カプセル剤状、軟質ゼラチンカプセル状、シロップ剤状またはエリキシル剤状、ピル状、糖衣錠状、液状、ゲル状、またはスラリー状が挙げられる。なお、これら製剤は医薬品賦形剤を含んでよく、上記医薬品賦形剤としては造粒剤及び崩壊剤、結合剤、平滑剤、防腐剤、着色剤、香料添加剤または甘味剤、植物油または鉱油、湿潤剤、及び増粘剤が挙げられるが、これに限定されない。非経口的投与用の剤形は、等張性で、無菌性且つ非毒性の注射水溶液または非水溶液形態、輸水溶液または輸非水溶液形態、または、懸濁水溶液または懸濁非水溶液形態とすることができる。上記溶液または懸濁液は、使用される投与量及び濃度において受容者に対する毒性を示さない物質を含んでもよく、このような物質として、1,3-ブタンジオール、リンガー溶液、ハンク溶液Hank’ssolution、生理食塩液、油類、脂肪酸、局所麻酔薬、保存料、緩衝剤、粘度または溶解度増大剤、水溶性抗酸化物質、油溶性抗酸化物質、及び金属キレート剤等が挙げられる。また、本発明は、インフルエンザA型ウイルスの診断用組成物であって、上記抗インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体に標識付けした標識を含む結合体を含んでなる診断用の組成物を提供する。本発明の診断用組成物は、検出可能な部分/作用物質などの、少なくとも1つの検出可能な標識を含む。上記標識は、本発明の上記モノクローナル抗体と非共有結合してもよい。また、上記標識は、共有結合によって上記モノクローナル抗体と直接結合してもよい。あるいは、上記標識は、1つまたは複数の結合化合物によって、上記モノクローナル抗体に結合してもよい。なお、上記標識を上記モノクローナル抗体に結合する技術は当業者にとって周知である。上記標識としての上記検出可能部分/作用物質は、好ましくは、酵素、補欠分子族、蛍光物質、発光物質、生物発光物質、放射性物質、陽電子放出金属、及び非放射性常磁性金属イオンからなる一群から選択される1つであるが、これに限定されない。また、本発明は、インフルエンザA型ウイルスにより発病する疾患の治療方法であって、インフルエンザA型ウイルスにより発病する疾患を罹患している対象に本発明のインフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体を投与する工程を含む治療方法を提供する。本発明の治療方法では、上記インフルエンザA型ウイルスは、好ましくは、H1亜型、H2亜型、及びH5亜型からなる一群から選択される少なくとも1つである。上記H1亜型としてはH1N1亜型、H1N2亜型、H1N3亜型、H1N4亜型、H1N5亜型、H1N6亜型、H1N7亜型、H1N8亜型、及びH1N9亜型が挙げられ、上記H2亜型としてはH2N1亜型、H2N2亜型、H2N3亜型、H2N4亜型、H2N5亜型、H2N6亜型、H2N7亜型、H2N8亜型、及びH2N9亜型が挙げられ、上記H5亜型としてはH5N1亜型、H5N2亜型、H5N3亜型、H5N4亜型、H5N5亜型、H5N6亜型、H5N7亜型、H5N8亜型、及びH5N9亜型が挙げられる。本発明の治療方法では、当業者に公知であって、インフルエンザA型ウイルスにより発病する疾患の任意の治療剤を本発明の上記モノクローナル抗体と一緒に投与してもよい。本発明の治療方法では、上記インフルエンザA型ウイルスにより発病する疾患は、新種のインフルエンザ、パンデミックインフルエンザ、及び季節性インフルエンザからなる一群から選択される1つであってよいが、これに限定されない。本発明の診断方法では、上記インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体の投与量を至適反応に応じて調節してもよい。例えば、上記インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体の投与量は、0.01~200mg/kgであり、好ましくは0.1~150mg/kgであり、より好ましくは1~100mg/kgであるが、これに限定されない。上記範囲の投与量を小分けにしたものを日々投与してもよいし、上記範囲の投与量を個々の状況において求められる要件に比例して減少させてもよい。また、本発明に係る上記組成物を1回で投与してもよいし、1日の間に時間をおいて複数回に渡って投与してもよい。本発明では、投与の様態は限定されず、患者の主治医によって決定することができる。本発明の治療法によれば、上記インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体の投与経路は、経口投与と非経口的投与とに分類することができる。好適な投与経路は静脈内投与法であるが、これに限定されない。また、本発明は、インフルエンザA型ウイルスにより発病する疾患の予防方法であって、本発明のインフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体を対象に投与する工程を含む予防方法を提供する。本発明の予防方法によれば、上記インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体は、当業者に公知である、インフルエンザA型ウイルスにより発病する疾患の任意の予防剤と併せて投与されてもよい。本発明の予防方法によれば、上記インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体の投与量は、至適反応に応じて調節してもよい。例えば、上記インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体の投与量は、0.01~200mg/kgであり、好ましくは0.1~150mg/kgであり、より好ましくは1~100mg/kgであるが、これに限定されない。上記投与量を幾つかに分けたものを日々投与してもよいし、または、上記投与量を、個別の状況において求められる要件に比例して減少させてもよい。本発明の組成物は、1回のみ投与してもよいし、1日の間に時間をおいて複数回投与してもよい。本発明の投与の様態は限定されず、患者の担当医によって決定されてもよい。また、本発明は、患者のインフルエンザA型ウイルス感染を診断する診断方法であって、1本発明に係る抗インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体にサンプルを接触させる工程と、2上記抗インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体と上記サンプルとの間の反応を検出する工程とを含む診断方法を提供する。または、上記診断方法は、1本発明に係る診断用組成物にサンプルを接触させる工程と、2上記診断用組成物と上記サンプルとの間に生じる反応を検出する工程とを含んでもよい。本発明に係る上記診断方法によれば、上記インフルエンザA型ウイルスは、H1亜型、H2亜型、及びH5亜型からなる一群から選択される1つまたは複数の亜型を含む。上記H1亜型としてはH1N1亜型、H1N2亜型、H1N3亜型、H1N4亜型、H1N5亜型、H1N6亜型、H1N7亜型、H1N8亜型、及びH1N9亜型が挙げられ、上記H2亜型としてはH2N1亜型、H2N2亜型、H2N3亜型、H2N4亜型、H2N5亜型、H2N6亜型、H2N7亜型、H2N8亜型、及びH2N9亜型が挙げられ、上記H5亜型としてはH5N1亜型、H5N2亜型、H5N3亜型、H5N4亜型、H5N5亜型、H5N6亜型、H5N7亜型、H5N8亜型、及びH5N9亜型が挙げられる。本発明の診断方法では、本発明のモノクローナル抗体は、必要に応じて、診断及び検出用標識を当業者に公知の任意の方法を使用して結合してもよい。本発明の診断方法では、上記サンプルは、好ましくは、粘液、唾液spittle、血液、肺細胞、肺組織粘液、呼吸組織、及びサルビアsalviaからなる一群から選択される1つであるが、これに限定されない。上記サンプルを当業者に公知の任意の従来の方法に従って調整してもよい。本発明の診断方法では、上記反応を検出する検出方法は、電波免疫検定法RIA、ELISA法、免疫蛍光法、免疫組織化学、FACS法、BIACORE法、ウエスタンブロット分析法等の同質結合免疫検定法及び異質結合免疫検定法からなる一群から選択される1つであるが、これに限定されない。また、当業者に公知の任意の検出方法を使用してもよい。また、本発明は、1本発明の抗インフルエンザA型ウイルスモノクローナル抗体と、2容器とを備えるインフルエンザA型ウイルス診断用キットを提供する。さらに、本発明は、1本発明のインフルエンザA型ウイルス感染の診断用組成物と、2容器とを備えるインフルエンザA型ウイルス感染の診断用キットを提供する。本発明に係る上記診断用キットによれば、上記インフルエンザA型ウイルスは、好ましくは、H1亜型、H2亜型、及びH5亜型からなる一群から選択される1つまたは複数の亜型を含む。上記H1亜型としてH1N1亜型、H1N2亜型、H1N3亜型、H1N4亜型、H1N5亜型、H1N6亜型、H1N7亜型、H1N8亜型、及びH1N9亜型が挙げられ、上記H2亜型としてH2N1亜型、H2N2亜型、H2N3亜型、H2N4亜型、H2N5亜型、H2N6亜型、H2N7亜型、H2N8亜型、及びH2N9亜型が挙げられ、上記H5亜型としてH5N1亜型、H5N2亜型、H5N3亜型、H5N4亜型、H5N5亜型、H5N6亜型、H5N7亜型、H5N8亜型、及びH5N9亜型が挙げられる。本発明に係る上記診断用キットでは、上記容器2に固形担体が備えられている。よって、本発明の上記モノクローナル抗体を上記固形担体に付着してもよい。なお、上記固形担体は多孔質または無孔質であってよく、平面状または非平面状でよい。実施例1:インフルエンザから快復した患者の血液中のPBMCの単離新型インフルエンザ感染の確認から2~4週間後の患者ボランティアを快復患者集団とした。上記患者ボランティアについては、血液中にインフルエンザウイルスH1N1亜型が存在しないこと、及び、上記新型インフルエンザウイルスに対する抗体を含むことが確認された。なお、本実験は施設内倫理委員会IRBの認可を受けて行われた。また、快復患者集団は以下の特徴1~4を有していた:1季節性インフルエンザのワクチンを未投与であり;2他の感染性ウイルスすなわち、HBsAgに対して陰性反応を示し、抗HCV抗体及び抗HIV抗体に対して陰性反応を示し;3血漿中のインフルエンザウイルスのH1N1亜型を対象とするRT-PCR法に対して陰性反応を示し;4上記インフルエンザA型ウイルスのH1N1亜型の単量体HAH1N1を分析するELISA法における血清中の滴定濃度が1:160以上であった。上述の各患者から約100mlの全血を採取し、lymphoprep商標Axis-Shield社、ノルウェー、1114545を使用して、採取した全血液中の末梢血単核細胞PBMCを単離した。このように単離したPBMCを、リン酸緩衝生理食塩水を使用して3回洗浄し、KMbankerII寒剤Cosmobio社、日本、KOJ-16092010を使用して、2×107細胞/mlの割合で懸濁し、液体窒素タンクに保存した。実施例2:モノクローナル抗体の一次スクリーニングJinetalJinA.etal.,2009年.NatMed.15,1088-1092に開示されている方法を使用して、抗原特異抗体を分泌しているB細胞をスクリーニングした。簡潔に説明すると、上記PBMCを1細胞/ウェルの密度でマイクロアレイチップの各ウェルに添加した。その後、プリコートした抗ヒトIgG抗体を使用して、上記単細胞から分泌される抗体を確認した。このようにして一次スクリーニングした上記B細胞がHA結合性抗体を分泌しているか否かについて、標識付けしたHA抗原を使用して、酵素結合免疫スポット測定法ELISPOT法;SedgwickJ.D.,2005年,MethodsMolBiol.Vol.302,pp.314によって確認した。そして、上記抗体を分泌している個々の細胞から得られた抗体の重鎖遺伝子及び軽鎖遺伝子の全配列を、逆転写ポリメラーゼ連鎖反応法RT-PCR法により取得した。次に、こうして得た重鎖DNA及び軽鎖DNAをpcDNA3.1発現ベクターInvitrogen社、米国、V790-20に挿入して、上記抗体の重鎖及び軽鎖のそれぞれを作製する発現ベクターを用意した。そして、用意した上記発現ベクターをCHO細胞へ同時遺伝子導入した。その後、このようにして形質転換させた上記CHO細胞に由来する抗体を使用して、HAに結合している82種類の抗体を以下の実施例3に記載するHA-ELISA法によって一次スクリーニングした。なお、上記抗体のうちHAに対して反応を示す全ての抗体を、上記抗体サンプルを連続希釈することなく一次スクリーニングした。実施例3:モノクローナル抗体とその生成物との二次スクリーニング一次スクリーニングを行った上記82種類の抗体から得られる組み換えHAに対して高い結合親和力を有するモノクローナル抗体を二次スクリーニングするために、単量体HAと三量体HAとを使用したHA-ELISAを行った。なお、インフルエンザA型ウイルスA/California/04/2009からの組み換え単量体HA11055-V08HはSinoBiological社中国から購入した。この組み換え単量体HAは、C末端において10個のポリヒスチジン残基を含み、トランスフェクトしたヒト細胞に由来するHAの細胞外ドメインmet1-gln529から構成される。組み換え三量体HAについては、IRRInfluenzaReagentResource、米国から提供されたものFR-180を使用した。H1N1A/California/04/2009から得た上記三量体HAは、上記C末端においてトロンビン切断部位を含み、三量化領域フォルドンと6つのヒスチジン残基とを含み、バキュロウイルス系を使用して作製した。上記抗体の上記HA抗原に対する反応性は、上記HAと上記抗体とを使用したELISA法によって測定した。詳しくは、まず、96-ウェルマイクロタイタープレートNunc社、デンマーク、449824の各ウェルに各単量体HAまたは各三量体HAを50μlずつ塗布250ng/mlした。そして、1ウシ血清アルブミンBSAを含むリン酸緩衝生理食塩水Teknova社、米国、D5120を使用して、上記96-ウェルマイクロタイタープレートをブロックし、3倍に連続希釈した抗体サンプル開始濃度:1μg/mlを上記プレートの各ウェルに供給した。次に、上記プレートを室温で1時間培養し、その後、ペルオキシダーゼ標識化ヤギ抗ヒト性ガンマ抗体Zymed社、米国、62.8420を使用して処理した。室温で1時間培養した後、テトラメチルベンジジンTMB;Sigma-Aldrich社、米国、T0440を使用して上記プレートを培養し、1NHClを添加して培養を中止した。その後、プレートリーダSpectramaxplus384MolecularDeviceを使用して450/570nmの吸光度を測定し、抗原-抗体の反応性をGraphpadprismprogramGraphPadSoftware社、米国を使用して図示した。図1に示すように、上記CT109抗体と、上記CT111-1と、上記CT154-2抗体との何れもが上記三量体HA及び上記単量体HAに対して高い結合活性を示したが、上記単量体HAに対する結合活性は上記三量体HAに対する結合活性よりも低かった。一方、上記CT104抗体と、上記120抗体と、上記CT123抗体との何れもが上記三量体HAに対しては高い結合活性を示したが、上記単量体HAに対しては低い結合活性を示すか、あるいは結合活性を示さなかった図2。他の抗体CT137抗体、CT151抗体、CT165抗体に関しては、上記三量体HAと上記単量体HAとのどちらの抗原に対しても低い結合活性を示すのみか、または結合活性を示さなかった図3。図1から3に示す結果に基づいて、上記一次スクリーニングにより選択された上記82種類の抗体から、上記三量体HAに対して高い結合活性を示す35種類の抗体を二次選択した。MN試験において、上記モノクローナル抗体の結合活性を定量化し、上記モノクローナル抗体の数を絞るために、二次選択した上記抗体の発現レベルを増大させることが必要であった。したがって、以下の方法により、上記抗体の遺伝子を上記cDNAベクターから再クローン化して、Celltrion社によって作製及び権利化されたMarEx発現ベクターを作製した。再クローニング後、上記抗体の遺伝子を含む上記MarEx発現ベクターを使用して、MN試験及びHI試験に必要な抗体を作製した。上記二次選択した上記35種類の抗体の重鎖遺伝子と軽鎖遺伝子とのそれぞれを含む原pcDNAを制限酵素NheI及びPmeIを使用して処理し、重鎖及び軽鎖を分離する。その後、得られた重鎖の遺伝子と軽鎖の遺伝子とを、上記制限酵素NheI及びPmeIを使用して予め処理を行っていたpCT145ベクターとpCT147ベクターとにそれぞれ挿入した。なお、上記pCT145ベクター及び上記pCT147ベクターは、それぞれ、上記重鎖発現ベクター及び上記軽鎖ベクター図4を作製するために、Celltrion社によって作製されたものである。次に、重鎖転写ユニットプロモーター重鎖遺伝子ポリAと軽鎖転写ユニットプロモーター軽鎖遺伝子ポリAとを含む発現ベクターを作製するために、上記重鎖遺伝子を含む上記pCT145ベクターを上記制限酵素PacIとAscIとを使用して処理し、重鎖転写ユニットを分離し、その後、上記軽鎖遺伝子を含む上記pCT147ベクターを上記制限酵素と同じ制限酵素を使用して処理し、分離した上記重鎖転写ユニットを挿入した。そして、上記重鎖転写ユニットと上記軽鎖転写ユニットとを含むベクターに対して、上記制限酵素を使用してスクリーニングを行った図5。スクリーニングを行った上記ベクターを、EndofreeplasmidmaxikitQIAGEN社、ドイツ、12362を使用して抽出し、このベクターのサンプルの一部を使用してヌクレオチド配列を分析し、上記抗体のヌクレオチド配列を決定した。次に、上記抽出した抗体のDNAをF2N細胞系Celltrion社、韓国の懸濁細胞に導入し、一過的にモノクローナル抗体を作製した。実施例3では、上記DNAの導入を以下の方法で行った。cationicpolymerFreeStyle商標MaxInvitrogen社、米国、16447-100を製造者のマニュアルに従って使用して、プラスミドDNAの上記細胞への導入を行った。上記導入の前日に、無血清培地EX-CELL293SAFC,LIK14571C;以下、EX-CELL293培地と称すを使用して培養した上記F2N細胞を遠心分離機で分離し、細胞濃度が1×106細胞/mlとなるように修飾EX-CELL293培地SAFC,LIK,65237;注文生産中に懸濁した。そして、容量が250mlの三角フラスコ内に80mlの上記細胞の懸濁液、または、容量が1lの三角フラスコ内に200mlの上記細胞の懸濁液を播種した。上記導入の当日に、80mlの上記細胞の懸濁液を播種した場合、モノクローナル抗体をエンコードする各DNAと100μlのFreeStyle商標Max試薬とを体積が1.6mlとなるようにOptiPROSFMII培地Invitrogen、米国、12309を使用して希釈し、穏やかに攪拌した。一方、200mlの上記細胞の懸濁液を播種した場合、250μgのDNAと250μgのFreeStyle商標Max試薬とを体積が4mlとなるようにOptiPROSFMII培地を使用して希釈し、穏やかに攪拌した。攪拌の処理の直後に、上記FreeStyle商標Max試薬を希釈した溶液と上記DNAを希釈した溶液とを混合し、この混合溶液を室温で10分間培養した。室温で19分間の培養処理中、播種した上記F2N細胞を0.8×106の細胞濃度となるように、新品の修飾EX-CELL293培地を使用して希釈した。上記培養を19分間行った後、上記DNAと上記とFreeStyle商標Max試薬を含む上記混合溶液を、トランスフェクション用に調整した上記F2N培養細胞に添加した。上記導入を行った翌日、上記量と同じ量のEX-CELL293培地を、導入後の上記F2N培養細胞に添加し、その後、上記F2N培養細胞を7~8日培養し、モノクローナル抗体作製した。実施例4:ウイルスに対するインビトロ中和活性の検討35種類のモノクローナル抗体をスクリーニングすることによって、HA-ELISAにおいて三量体HAに対する高い結合親和力を示した11種類の抗体を選択した。そして、これら11種類の抗体の、多様のインフルエンザウイルスに対する中和活性を検討するために、MN試験を実施した。<実施例4-1:MDCK細胞系の培養及びウイルス濃度の決定>メイディンダービーイヌ腎臓細胞MDCK細胞系として、London細胞系MDCK-Lを使用した。このMDCK細胞系を、10のFBSAtlasBiologicals社、米国、F0500A、1×ペニシリン/ストレプトマイシンGibco社、米国、15140、25mMのHEPESGibco社、米国、15630、及び、2mMのL-グルタミンGibco社、米国、25030を含むDMEM培地Gibco社、米国、11965を用いて、加湿器付き5CO2インキュベーターにおいて37°Cで培養した。そして、組織培養感染量TCID50を決定するために、ウイルス濃度をELISAにより定量化した。ウイルス濃度の決定は、以下のように実施した。最初に、ウイルス希釈液[DMEMGibco社、米国、3のBSAGibco社、米国、15260、1×ペニシリン/ストレプトマイシンGibco社、米国、及び、25mMのHEPESGibco社、米国]を用いて、ウイルスのストックを10倍に段階希釈した。次に、希釈後のウイルス100μlを、96個のウェルを含むプレートの各ウェルに添加した。負のコントロールとして、ウイルスを含有しないウイルス希釈液を使用した。そして、培養していた上記MDCK細胞系をトリプシンで処理した後に上記培養用インキュベーターから取り出し、取り出したMDCK細胞系を、トリプシンを中和するためにMDCK培地で処理した。次に、細胞ペレットをリン酸緩衝食塩水で2回洗浄した後に、ウイルス希釈液で細胞濃度が5×105個/mlになるまで希釈した。3~4μg/mlのTPCKトリプシンSigma社、米国を、上記ウイルスを含む96個のウェルを含むプレートに添加した後、ただちに100μlのMDCK細胞系をプレートの各ウェルに添加し、さらに、加湿器付き5CO2インキュベーターにおいて37°Cで20時間のインキュベーションを実施した。インキュベーション後のプレートをリン酸緩衝食塩水で1回洗浄し、そして、プレートの各ウェルに、低温アセトンとリン酸緩衝食塩水PBS80:20との混液を200μl添加した。次に、各細胞を8分間固定し、そして、プレートを室温で20分間乾燥させた。200μlのリン酸緩衝食塩水をプレートの各ウェルに添加して、各ウェルを2回洗浄した。プレートの各ウェルに、1のBSAを含むリン酸緩衝食塩水で2,000倍に希釈したビオチン化抗核タンパク質NPモノクローナル抗体Milipore社、米国、MAB8257Bを100μl添加し、室温で1時間インキュベーションした。プレートを各ウェル当たり200μlのリン酸緩衝食塩水で3回洗浄した。その後、ストレプトアビジン/HRP結合型抗体を、1のBSAを含むリン酸緩衝食塩水で20,000倍に希釈した。そして、プレートの各ウェルに、この抗体希釈物100μlを添加して、室内圧力で1時間のインキュベーションを行った。プレートをリン酸緩衝食塩水で4回洗浄した後に、100μlのOPD溶液Sigma社、米国、P8287を各ウェルに添加し、プレートを室温で10分間現像した。このプレートを各ウェル当たり50μlの3MのHClで処理し、発色現像を停止させた。次に、各ウェルのOD490を測定した。測定したOD490に基づいて、TCID50をReedMuenchの方法TheAmerican1938によって算出した。<実施例4-2:MNアッセイ>ウイルス希釈液を用いて、各抗体を10μg/mlの濃度まで希釈した。この初濃度から、ウイルス希釈液を用いて、抗体希釈物2倍に段階希釈した。次に、96個のウェルを含むプレートの各ウェルに、段階希釈した希釈物を50μl添加した。また、上記プレートの各ウェルに、50μlのウイルスを100TCID50に対応する濃度で添加し、加湿器付き5CO2インキュベーターにおいて37°Cで1時間インキュベーションした。次に、3~4μg/mlのTPCKトリプシンSigma社、米国、T1426を各ウェルに添加し、さらに、100μlの処理済みMDCK細胞を各ウェルに添加した後に、加湿器付き5CO2インキュベーターにおいて37°Cで20時間インキュベーションした。そして、実施例4-1で説明したウイルス定量化法と同じ方法でMNアッセイを実施し、こうして各ウェルのOD490値を決定した。上記細胞だけを導入したウェルに比べて高いOD490値を示したウェルが、ウイルスに感染したと判定した。ウイルス抗原を検出しなかった各抗体について、OD490値のうち、その抗体の最低濃度μg/mlを表1に示す。なお、抗体の濃度が低いことは、ウイルスに対する中和活性が高いことを意味している。H1、H2、H3、及び、H5亜型のインフルエンザウイルスに対する抗体となり得る11種類の候補について行ったMNアッセイの結果から分かるように、CT104は、低濃度0.313~0.625μg/mlでは2つのパンデミックH1N1亜型のウイルスA/Texas/05/2009及びA/NewYork/18/2009ならびに2つの季節性H1N1亜型のウイルスA/SolomonIslands/3/2006及びA/Ohio/83に対して中和活性を示した。また、CT104は、2種類のH5N1亜型のウイルスA/Vietnam/1203/04及びA/Anhui/1/05を、それぞれ1.25μg/ml及び0.625μg/mlの濃度で中和した。ただし、このCT104抗体は、H2N2亜型のウイルスA/AnnArbor/6/60ca及びH3N2亜型のウイルスA/Wisconsin/67/2005に対しては中和活性を示さなかった。CT123は、試験を行った4種類のH1N1亜型のウイルスに対してのみ、中和活性を示した。特に、CT120抗体は、4種類のH1N1亜型のインフルエンザウイルス、1種類のH2N2インフルエンザ亜型のインフルエンザウイルスA/AnnArbor/6/60ca、及び、2種類のH5N1亜型のインフルエンザウイルスに対して、高い中和活性を示した。ただし、ここに記載した各抗体は、H3クレイドに属するH3N2亜型に対しては中和活性を示さなかった。ウイルスに対する中和活性を持つ、スクリーニング後の3種類の抗体のIC50値を測定及び比較した。測定結果を下の表2に示す。ここで、IC50値とは、抗体がウイルスに対する最大中和活性の50の中和活性を示す抗体濃度であり、IC50の値が低いほど抗体の中和活性が高いことを意味する。上の表2から分かるように、表中の3種類の抗体は、IC50値が非常に低く、したがって、表2に示す2種類のウイルスに対して高い中和活性を持っている。実施例5:ウイルスによって引き起こされる血球凝集反応に対して抗体が持つ阻害能力の検討6個のウェルを含むV字底部型プレートで、抗体を2倍に段階希釈した後、4倍のHA単位のウイルスを抗体に添加及び混合した。次に、このプレートを室温で30分間インキュベーションし、その後、1のトリの赤血球をプレートの各ウェルに添加した。赤血球凝集阻止のエンドポイントを、血球凝集反応が観察されない抗体濃度の最低値として決定した。この結果、試験を行ったどの抗体も、2種類のパンデミックH1N1亜型のウイルスA/Texas/05/2009-RG15及びA/NewYork/18/2009-RG18に対して、高濃度>20μg/mlにおいても血球凝集を阻害しなかった表3。実施例6:動物実験による、抗体のインフルエンザウイルス感染に対する予防効果及び治療効果の検討<実施例6-1:マウスの生存実験>上記実施例においてスクリーニングしたCT104、CT120、及び、CT123抗体が、マウスにおいてH1N1及びH5N1亜型のウイルスに対して予防効果及び治療効果を含むかどうかを検討するために、以下の実験を実施した。5匹のマウスからなる各個体群を、10×LD50のウイルスに経鼻的に感染させた。上記3つのスクリーニング済み抗体CT-104、CT-120、及び、CT123、及び、負のコントロール抗体CT-P6を、それぞれ、マウス1kg当たり10mgの量で、ウイルス感染の24時間前、及び、ウイルス感染から48時間後に腹腔注射によってマウスに投与した。実験結果を図6に示す。図6に示すように、10×LD50のH5N1亜型のウイルスA/Vietnam/1203/2004に感染させる24時間前に、CT-104またはCT-120をマウスに注射した場合には、全てのマウスが生存した。その一方で、マウスをCT-123で処置した場合には、12日後に20のマウスが死亡した。ネガティブコントロール抗体CT-P6の場合、コントロール抗体を注射したマウスが全て7日後に死亡した図6A。抗体の治療効果検討するためにウイルス感染から2日後に上記抗体を注射した場合、CT-104及びCT-120を注射したマウスは全て最長14日観察期間の最後の日まで生存したが、ネガティブコントロール抗体CT-P6またはCT-123を注射したマウスは、全て死亡した図6B。抗体の予防効果を検討するためにパンデミックH1N1亜型のウイルスA/California/07/2009に感染させる24時間前に抗体を注射した場合、CT-120及びCT-123を注射したマウスは全て最長14日観察期間の最後の日まで生存した。また、CT-104を注射したマウスは80が生存したが、ネガティブコントロール抗体CT-P6を注射したマウスは全て死亡した図6C。さらに、季節性H1N1亜型のウイルスA/puertoRico/8/1934に感染させる24時間前にCT-104またはCT-123を投与したマウスは、全て観察期間中生存した。また、CT-120を投与したマウスは80の生存率を示したが、ネガティブコントロール抗体CT-P6抗体を注射したマウスは全て死亡した図6D。<実施例6-2:フェレット実験>治療上の利点について調べるために、上記のように選択したCT120について、フェレットの動物モデルに対して試験を行った。なお、フェレットの動物モデルは、インフルエンザウイルスに対してヒトと類似の感受性及び症状を示す。各試験群は9匹のフェレットから構成したが、ネガティブコントロール群には、ウイルス感染症の初濃度を測定するために、4匹のフェレットを追加した。フェレットに対して、1mlの1×106EID50/mlインフルエンザウイルスA/California/04/09H1N1を、順化後に経鼻的または経気管的に接種した。ウイルス接種から24時間後に、CT120を1回静脈注射した。試験群1には15mg/kgのCT120を注射し、試験群2には30mg/kgのCT120を注射した。試験群3については、30mg/kgのCT120を3日間のあいだ24時間ごとに注射した。ネガティブコントロール群については、ウイルス接種から24時間後に、30mg/kgのCT-P6抗体を1回静脈注射した。各試験群のそれぞれのフェレットの鼻洗浄液を、ウイルス接種から1、3、5、及び、8日後に収集し、受精卵を用いて収集したサンプル中のウイルス濃度を測定した。各試験群の3匹のフェレットをウイルス接種から1、3、5、及び、8日後に屠殺し、取り出した肺組織におけるウイルス濃度を、受精卵を用いて測定した。ホモジナイザーを用いて、抗生物質肺組織1g当たり1mlを含むPBS中で各肺組織を粉砕し、遠心分離後に上清を分離した。鼻洗浄液を、それぞれ、抗生物質を含む1mlのPBSを用いて収集し、遠心分離後に上清を分離し、ウイルス濃度を測定した。肺組織のホモジネートまたは鼻洗浄液のいずれかの上清を、抗生物質を含むPBSで10倍に段階希釈し、この希釈後の上清を10~13日の日齢の受精卵に対して接種した。48時間インキュベーションした受精卵から得た尿膜腔液50μlと、同体積の0.5の赤血球シチメンチョウとの混合物を30分間インキュベーションした後に、血液を凝集させることによって、ウイルスを滴定した。鼻洗浄液におけるウイルス力価は、コントロール群においては、接種から5日後まで高い>log104EID0/ml状態が続いた後に低下した。その一方で、CT120を注射した個体群においては、ウイルス力価が大幅に低下し、接種から8日後にはウイルスが検出されなかった図7。このように、CT120で処置した個体群においては、コントロール群に比べて急速なウイルス排除が観察された。特に、試験群3において最初の3日間は毎日抗体を注射した場合に、ウイルスがさらに大幅に抑制された。肺組織におけるウイルス力価は、コントロール群においては、感染から5日後まで高い>log4.5EID50/ml状態が続いた後に低下した。その一方で、CT120を注射した個体群においては、ウイルス力価が著しく低下した。感染から8日後には、ウイルスが検出されなかった図8。特に、フェレット実験は、試験群2及び3においてウイルスがさらに大幅に抑制されることを示している。これらの結果は、30mg/kgのCT120を投与すれば、15mg/kgの投与量に比べてより効果的にウイルスの増殖を抑制できることを実証している。"