"ホップエキスおよび粉末化基材を含んでなる粉末ホップエキスを酸化することを含んでなる、ホップエキス酸化反応物の製造方法。前記ホップエキスが、超臨界二酸化炭素または有機溶媒によって抽出処理されたものである、請求項1に記載の製造方法。前記粉末化基材が、食品または食品添加物から選択される基材である、請求項1または2に記載の方法。前記粉末化基材が、糖類、多糖類、無機質担体、醸造原料からなる群から選択される少なくとも一つのものである、請求項3に記載の方法。前記粉末化基材が、澱粉、デキストリン、シクロデキストリン、セルロース、珪藻土、パーライト、活性白土、活性炭、シリカゲル、合成吸着樹脂、ホップ、ホップ粕からなる群から選択される少なくとも一つのものである、請求項1~4のいずれか一項に記載の方法。前記ホップエキスと粉末化基材との重量比が1:1~1:10である、請求項1~5のいずれか一項に記載の方法。前記酸化された粉末ホップエキスからホップエキス酸化反応物を単離することをさらに含んでなる、請求項1~6のいずれか一項に記載の方法。前記ホップエキス酸化反応物が、次の成分あるいは成分群A、B、C、D、E、F:Aα酸Bイソα酸Cβ酸DOxiFr1EOxiFr2Fβ1、β2、β3、β4の少なくとも一つを含有し、A~Fの各重量比が、D/AB>01以上またはF/C>03以上またはE/C>2以上である、請求項1~7のいずれか一項に記載の方法。前記Fにおけるβ1が、式Iで表されるいずれかの化合物:を含んでなりβ2が、式IIで表されるいずれかの化合物:を含んでなり、β3が、以下の式IIIまたはIVで表されるいずれかの化合物:を含んでなり、β4が、式VまたはVIで表されるいずれかの化合物:を含んでなる、請求項8に記載の方法。前記ホップエキス酸化反応物のHPLC分析による総ピーク面積に対するイソα酸、α酸およびβ酸のピーク面積の割合が50以下である、請求項1~9のいずれか一項に記載の方法。請求項1~10に記載のいずれか一項に記載の方法により得られる、ホップエキス酸化反応物。次の成分あるいは成分群A、B、C、D、E、F:Aα酸Bイソα酸Cβ酸DOxiFr1EOxiFr2Fβ1、β2、β3、β4の少なくとも一つを含有し、A~Fの各重量比が、D/AB>01以上またはF/C>03以上またはE/C>2以上であることを特徴とする、ホップエキス酸化反応物。前記Fにおけるβ1が、式Iで表されるいずれかの化合物:を含んでなりβ2が、式IIで表されるいずれかの化合物:を含んでなり、β3が、以下の式IIIまたはIVで表されるいずれかの化合物:を含んでなり、β4が、式VまたはVIで表されるいずれかの化合物:を含んでなる、請求項12に記載のホップエキス酸化反応物。HPLC分析による総ピーク面積に対するイソα酸、α酸およびβ酸のピーク面積の割合が50以下である、ホップエキス酸化反応物。請求項10~14のいずれか一項に記載のホップエキス酸化反応物を有効成分として含んでなる、脂質吸収抑制剤。請求項10~14のいずれか一項に記載のホップエキス酸化反応物が添加されてなる、飲食品。脂質吸収抑制剤の製造における、請求項10~14のいずれか一項に記載のホップエキス酸化反応物の使用。これまでにホップエキスに含まれるイソα酸等にPPARアゴニスト作用があり、この作用を介して脂質代謝改善機能があることが報告されている特許第4503302号。また、イソα酸には膵リパーゼ阻害活性があり、脂質の吸収を抑制する作用があることが報告されているIntJObes2005Aug299917。このような理由からα酸、β酸、イソα酸などのホップ苦味成分を主成分に含むホップエキスは健康機能性素材としての活用が期待される。しかしながら、イソα酸には強烈な苦味があり、α酸、β酸には強烈なエグ味があるため、飲食品や医薬品へ応用する際にはその苦味やエグ味の抑制が課題となっていた。本発明者らは、ホップエキス中のα酸フムロン類β酸ルプロン類イソα酸イソフムロン類などを酸化反応させて含量を低下させて得られたホップエキス酸化反応物がイソα酸等の含量を大幅に低下させているにも関わらず、健康機能性効果として脂質吸収抑制作用を有すること、ホップエキス酸化反応物の苦味エグ味が大幅に低減されること、さらに、ホップエキスを粉末化して酸素と接触させることでホップエキス酸化反応物を効率よく製造することができることを見出した。本発明はこれらの知見に基づくものである。すなわち、本発明によれば、ホップエキスおよび粉末化基材を含んでなる粉末ホップエキスを酸化することを含んでなる、ホップエキス酸化反応物の製造方法が提供される。本発明によれば、また、上記方法により製造された、苦味エグ味が低減されたホップエキス酸化反応物以下、単に本発明のホップエキス酸化反応物ということがある、およびホップエキス酸化反応物が添加されてなる、飲食品以下、単に本発明の飲食品ということがあるが提供される。本発明によれば、また、ホップエキス酸化反応物を有効成分として含んでなる、脂質吸収抑制剤以下、単に本発明の抑制剤ということがあるが提供される。本発明によれば、更に、ホップエキス酸化反応物をヒトを含む哺乳動物に投与することを含んでなる、脂質吸収抑制方法が提供される。本発明によれば、脂質吸収抑制効果を有する飲食品の製造のためのホップエキス酸化反応物の使用が提供される。本発明のホップエキス酸化反応物は脂質吸収抑制作用を有するとともに、異性化されたホップエキスのような強烈な苦味や異性化処理されていないホップエキスのような強烈なエグ味がない。従って、本発明のホップエキス酸化反応物や本発明の抑制剤は脂質吸収抑制作用などの生理活性を期待しつつ、苦味エグ味のマスキング手段を講じずにそのまま摂取できる点で有利である。以下の例に基づいて本発明を具体的に説明するが、本発明はこれらの例に限定されるものではない。実施例1:超臨界二酸化炭素抽出ホップエキスからのホップエキス酸化反応物の調製1超臨界二酸化炭素抽出したホップエキスCO2HopExtract;α酸556ww、β酸226ww、イソα酸未検出;hopsteiner社製60gとデキストリンTK16;松谷化学120gを重量比13で均一になるよう混合し、ホップエキスを粉末状形態にした。得られた粉末状ホップエキスを80°Cで24時間加熱し、酸化反応に付した。実施例2:超臨界二酸化炭素抽出ホップエキスからのホップエキス酸化反応物の調製2超臨界二酸化炭素抽出したホップエキスBetaAromaExtract;β酸413ww、α酸およびイソα酸未検出;hopsteiner社製20gとデキストリンTK16;松谷化学60gを重量比13で均一になるよう混合し、ホップエキスを粉末状形態にした。得られた粉末状ホップエキスを80°Cで24時間加熱し、酸化反応に付した。実施例3:超臨界二酸化炭素抽出した後に異性化処理をしたホップエキスからのホップエキス酸化反応物の調製超臨界二酸化炭素抽出した後に異性化処理をしたホップエキスIsomerizedKettleExtract;イソα酸530ww、β酸200ww、α酸未検出;hopsteiner社製20gとデキストリンTK16;松谷化学60gを重量比13で均一になるよう混合し、ホップエキスを粉末状形態にした。得られた粉末状ホップエキスを80°Cで24時間加熱し、酸化反応に付した。実施例4:ホップエキス酸化反応物の分析実施例1~3で調製したホップエキス酸化反応物を以下のように分析用前処理を行った。[分析前処理]反応後の粉末状ホップエキスからエタノールによりホップエキス成分を抽出し、ホップエキス由来固形分が25mgmLになるように調製し、HPLCにて分析した。また、比較として実施例1~3で原料として使用したホップエキスについても同じ固形分濃度になるように調製して分析した。[HPLC構成装置]ホンプ:LC20AD×3SHIMADZUデガッサー:DGU20A5SHIMADZUシステムコントローラー:CBM20ASHIMADZUオートサンプラー:SIL20ACHTSHIMADZUカラムオーブン:CTO20ACSHIMADZUフォトダイオードアレー検出器:SPDM20ASHIMADZU波形解析ソフトウェア:LCSolutionSHIMADZU[HPLC条件]カラム:AlltimaC1821mmIDx100mm粒子径3μm流速:06mLmin溶出溶媒A:水リン酸、100002EDTA002溶出溶媒B:アセトニトリル溶出溶媒C:水注入量:3μLカラム温度:40°C検出波長:270nmOxiFr1OxiFr2イソα酸β14の検出および定量波長、α酸およびβ酸の検出波長355nmα酸およびβ酸定量波長グラジエントプログラム:上記分析条件にて、イソα酸、具体的にはtransイソコフムロンの前方に溶出され、270nmで検出される成分群をOxidationFraction1OxiFr1と定義する。また、α酸、具体的にはコフムロン溶出時間前方から分析終了時点検出器内の移動相が洗浄溶媒に切り替わる時間までに溶出され、α酸およびβ酸ピークを除く270nmで検出される成分群をOxidationFraction2OxiFr2と定義する。さらに、OxiFr2に含まれ、後述するようにβ酸に酸素が一つ付加した酸化化合物をβ1、β2、β3、β4と定義する。波形解析にあたって、溶媒ピークやインジェクションショックによる負ピークが生じる領域は解析除外領域とした。また、OxiFr1、OxiFr2、β14の定量解析時に使用する面積値の求め方は後述する。上記実施例1で調製したホップエキス酸化反応物分析時のHPLCクロマトグラムを図2-1~図2-3、図2-4に示す。また、原料に用いたホップエキス分析時クロマトグラムを図3-1および図3-2、ならびに図3-3に示す。OxiFr1と定義する成分群は図2-1で図示された領域に検出される。定量解析時にはこの画分に検出された全ピーク面積の合算値を使用する。また、OxiFr2と定義する成分群は図2-2、図3-2で示された領域に検出される。定量解析時には斜線で示した部分の面積を使用する。β1-4各成分は図2-3で示したピーク群で、定量解析時には斜線で示した部分の面積を使用する。上記実施例2で調製したホップエキス酸化反応物分析時のHPLCクロマトグラムを図4-1~図4-3、および図4-4に示す。また、原料に用いたホップエキス分析時クロマトグラムを図5-1および図5-2、ならびに図5-3に示す。実施例1の場合と同様にOxiFr1と定義する成分群は図4-1で図示された領域に検出されるが、実施例2で使用した原料エキスにはα酸およびイソα酸が含まれていないため、OxiFr1の生成量はわずかであった。また、実施例1と同様にOxiFr2と定義する成分群は図4-2、図5-2で示された領域に検出される。定量解析時には斜線で示した部分の面積を使用する。β1-4各成分は図4-3で示したピーク群で、定量解析時には斜線で示した部分の面積を使用する。実施例2の結果から、β1-4各成分を含むOxiFr2はホップエキス中のβ酸の酸化により生成することが示唆された。β酸の酸化により生成したβ1-4の各成分について、ピークを分取して精密質量測定が可能な質量分析装置で分析を実施した。その結果得られた測定値からβ1およびβ2はコルプロンに酸素が一つ付加した化合物であり、β3およびβ4はルプロン、アドルプロンに酸素が一つ付加した化合物であることが示唆された。上記実施例3で調製したホップエキス酸化反応物分析時のHPLCクロマトグラムを図6-1~図6-3、および図6-4に示す。また、原料に用いたホップエキス分析時クロマトグラムを図7-1および図7-2、ならびに図7-3に示す。実施例1の場合と同様にOxiFr1と定義する成分群は図6-1で図示された領域に検出される。定量解析時にはこの画分に検出された全ピーク面積の合算値を使用する。また、実施例1および2の場合と同様にOxiFr2と定義する成分群は図6-2、図7-2で示された領域に検出される。定量解析時には斜線で示した部分の面積を使用する。β1―4各成分は図6-3で示したピーク群で、定量解析時には斜線で示した部分の面積を使用する。定量方法OxiFr1、OxiFr2、およびβ1-4の定量は、それぞれ算出した面積値を基に、イソα酸換算で定量を実施する。具体的にはイソα酸標品を用いて作成した検量線を使用して求めることができる。α酸、β酸、イソα酸の定量はそれぞれの標品を用いて作成した検量線を使用して求めることができる。α酸、β酸およびイソα酸の標品としては、例えばAmericanSocietyofBrewingChemistsASBCから入手可能なInternalCalibrationStandardsのICE2、ICSI2、ICST2などが利用できる。ピーク面積比率の算出ホップエキスを酸化反応に付すことで、エキス中のα酸、β酸およびイソα酸は低減し、OxiFr1、OxiFr2といった成分群が増加することから、ホップエキス酸化反応物はHPLC分析を実施した際に波長270nmで検出される成分の総ピーク面積に対する同波長で検出されるα酸、β酸およびイソα酸ピークの面積比率からも評価可能である。総ピーク面積の算出にあたっては、OxiFr1の始点からOxiFr2の終点までの領域に検出されるピークを解析対象とする。各分析サンプルにおけるOxiFr1/α酸イソα酸、β1-4/β酸、OxiFr2/β酸の重量比率は表1の通りであった。実施例2で使用した原料エキスにはα酸とイソα酸が含まれないため、OxiFr1/α酸イソα酸に関しては算出できない。図1、2、3および表2の結果から明らかなように、粉末化後酸化反応に付して製造したホップエキス酸化反応物ではα酸、β酸、イソα酸が大きく低下あるいは消失していた。ホップエキス酸化反応物のHPLC分析による総ピーク面積に対するイソα酸、α酸およびβ酸のピーク面積の割合は実施例1および2で10以下であり、実施例3で151であった。また、粉末化後酸化反応に付したホップエキスではOxiFr1、OxiFr2、β14が新たに出現もしくは大きく増加していた。実施例5超臨界二酸化炭素抽出したホップエキスCO2HopExtract;α酸556ww、β酸226ww、イソα酸未検出;hopsteiner社製60gとデキストリンTK16;松谷化学180gを重量比13で均一になるよう混合し、ホップエキスを粉末状形態にした。得られた粉末状ホップエキスを40°C、60°C、80°Cで8時間~196時間加熱し、酸化反応に付した。酸化反応中、経時的にサンプリングし、実施例4記載の方法で分析し、各分析サンプルにおけるOxiFr1/α酸イソα酸、β1-4/β酸、OxiFr2/β酸の重量比率を求めた。結果を表3に示す。表3から明らかなように、デキストリンを粉末化基材に使用した場合、酸化反応時の温度が高いほど酸化反応の進行が早まることが確認された。図8-1、図8-2に原料エキスと60°C24時間加熱したエキス酸化反応物の成分プロファイルを示す。実施例6超臨界二酸化炭素抽出したホップエキスCO2HopExtract;α酸556ww、β酸226ww、イソα酸未検出;hopsteiner社製20gとデキストリンTK16;松谷化学を重量比12~19で均一になるよう混合し、ホップエキスを粉末状形態にした。得られた粉末状ホップエキスを80°Cで8時間~48時間加熱し、酸化反応に付した。酸化反応中、経時的にサンプリングし、実施例4記載の方法で分析し、各分析サンプルにおけるOxiFr1/α酸イソα酸、β1-4/β酸、OxiFr2/β酸の重量比率を求めた。結果を表4に示す。原料エキスとデキストリンの比が11の状態では均一な粉末とならずにエキスがダマになってしまい反応効率が低下した。一方、完全に均一な粉末状態にできた13~19のものに関しては効率的に反応が進行した。エキスとデキストリン比が変化してもエキス酸化反応物の成分プロファイル自体の変化はなかった。実施例7超臨界二酸化炭素抽出したホップエキスCO2HopExtract;α酸556ww、β酸226ww、イソα酸未検出;hopsteiner社製20gと糖質系賦形剤デキストリン:TK16、マックス1000;ともに松谷化学、セルロース:FD101、ST100;ともに旭化成ケミカルを重量比13で均一になるよう混合し、ホップエキスを粉末状形態にした。得られた粉末状ホップエキスを80°Cで8時間~93時間加熱し、酸化反応に付した。酸化反応中、経時的にサンプリングし、実施例4記載の方法で分析し、各分析サンプルにおけるOxiFr1/α酸イソα酸、β1-4/β酸、OxiFr2/β酸の重量比率を求めた。結果を表5に示す。いずれの基材を用いた場合でも同様に酸化反応が進行した。また、酸化生成物の成分プロファイルも同様であった。反応時間8時間のホップエキス酸化反応物のHPLC分析による総ピーク面積に対するイソα酸、α酸およびβ酸のピーク面積の割合は15以下であり、反応時間24時間以上のホップエキス酸化反応物のHPLC分析による総ピーク面積に対するイソα酸、α酸およびβ酸のピーク面積の割合は10以下であった。また、図8-3にFD101を用いて粉末化したエキスの80°C8時間、24時間加熱時のエキス酸化反応物の成分プロファイルを示す。実施例8超臨界二酸化炭素抽出したホップエキスCO2HopExtract;α酸556ww、β酸226ww、イソα酸未検出;hopsteiner社製20gと珪藻土ラヂオライト2000、300;昭和化学を重量比12~13で均一になるよう混合し、ホップエキスを粉末状形態にした。得られた粉末状ホップエキスを室温または80°Cで4時間~48時間加熱し、酸化反応に付した。酸化反応中、経時的にサンプリングし、実施例4記載の方法で分析し、各分析サンプルにおけるOxiFr1/α酸イソα酸、β1-4/β酸、OxiFr2/β酸の重量比率を求めた。結果を表6に示す。粉末化基材に珪藻土を用いた場合、酸化反応時に加熱をせずとも効率的に反応が進行した。いずれのホップエキス酸化反応物のHPLC分析による総ピーク面積に対するイソα酸、α酸およびβ酸のピーク面積の割合は10以下であった。加熱せずとも反応が効率的に進行したのは、珪藻土に含まれる金属類が酸化反応を触媒したためと考えられる。この結果から、金属類を含む基材を用いることで反応効率をより高めることが可能であることが示唆される。図8-4に各条件で反応させたエキス酸化反応物のプロファイルを示す。実施例9超臨界二酸化炭素抽出したホップエキスCO2HopExtract;α酸556ww、β酸226ww、イソα酸未検出;hopsteiner社製20gと粉砕したホップ粕BP55;hopsteiner社製を重量比13で均一になるよう混合し、ホップエキスを粉末状形態にした。得られた粉末状ホップエキスを80°Cで24時間~48時間加熱し、酸化反応に付した。酸化反応中、経時的にサンプリングし、実施例4記載の方法で分析し、各分析サンプルにおけるOxiFr1/α酸イソα酸、β1-4/β酸、OxiFr2/β酸の重量比率を求めた。結果を表7に示す。粉末化基材としてホップ粕を使用した場合でも効率よく酸化反応が進行した。いずれのホップエキス酸化反応物のHPLC分析による総ピーク面積に対するイソα酸、α酸およびβ酸のピーク面積の割合は10以下であった。図8-5にエキス酸化反応物のプロファイルを示す。実施例10超臨界二酸化炭素抽出したホップエキスCO2HopExtract;Hopsteinerからα酸画分を分取して調製したホップエキスα酸94.4ww、β酸3.36ww、イソα酸未検出10gとデキストリンTK16;松谷化学を重量比13で均一になるよう混合し、ホップエキスを粉末状形態にした。得られた粉末状ホップエキスを80°Cで8時間~72時間加熱し、酸化反応に付した。酸化反応中、経時的にサンプリングし、実施例4記載の方法で分析し、各分析サンプルにおけるOxiFr1/α酸イソα酸、β1-4/β酸、OxiFr2/β酸の重量比率を求めた。結果を表8に示す。原料エキス中のα酸量に対するβ酸量が極めて低いため、β酸に関するパラメータについては考慮していない。α酸が酸化することで主にOxiFr1が生成することが明らかとなった。反応時間24時間以上のいずれのホップエキス酸化反応物のHPLC分析による総ピーク面積に対するイソα酸、α酸およびβ酸のピーク面積の割合は10以下であった。図8-6に原料に使用したエキスと24時間酸化反応をさせたエキス酸化反応物の成分プロファイルを示す。実施例11エタノール抽出したホップエキスEtOHHopExtract;α酸318ww、β酸248ww、イソα酸277;hopsteiner社製20gとセルロースFD101;旭化成ケミカルズを重量比13で均一になるよう混合し、ホップエキスを粉末状形態にした。得られた粉末状ホップエキスを80°Cで8時間~24時間加熱し、酸化反応に付した。酸化反応中、経時的にサンプリングし、実施例4記載の方法で分析し、各分析サンプルにおけるOxiFr1/α酸イソα酸、β1-4/β酸、OxiFr2/β酸の重量比率を求めた。結果を表9に示す。原料としてエタノール抽出ホップエキスを使用した場合でも酸化反応が進行することが確認された。いずれのホップエキス酸化反応物のHPLC分析による総ピーク面積に対するイソα酸、α酸およびβ酸のピーク面積の割合は10以下であった。図8-7に原料に使用したエキスと24時間酸化反応をさせたエキス酸化反応物の成分プロファイルを示す。実施例12超臨界二酸化炭素抽出した後に異性化処理をしたホップエキスIsomerizedKettleExtract;イソα酸530ww、β酸200ww、α酸未検出;hopsteiner社製20gとデキストリンTK16;松谷化学を重量比13で均一になるよう混合し、ホップエキスを粉末状形態にした。得られた粉末状ホップエキスを80°Cで8時間~72時間加熱し、酸化反応に付した。酸化反応中、経時的にサンプリングし、実施例4記載の方法で分析し、各分析サンプルにおけるOxiFr1/α酸イソα酸、β1-4/β酸、OxiFr2/β酸の重量比率を求めた。結果を表10に示す。異性化処理を施しイソα酸をリッチにしたエキスを原料に用いた場合でも酸化反応が進行することが確認された。ホップエキス酸化反応物のHPLC分析による総ピーク面積に対するイソα酸、α酸およびβ酸のピーク面積の割合は反応時間8時間で44.9、反応時間24時間で15.1、反応時間48時間以上で10以下であった。図8-8に8時間~72時間酸化反応をさせたエキス酸化反応物の成分プロファイルを示す。実施例13:官能評価実施例1、2、3、5、7~12で得られたホップエキス酸化反応物について、その苦味エグ味を官能評価にてホップエキスと比較した。[苦味エグ味官能評価の評価方法]実施例1、2、3、5~12で得られたホップエキス酸化反応物及び、比較例としてホップエキス酸化反応物の原料に用いたホップエキスおよび異性化ホップエキスIsoExtract30;hopsteiner社製の苦味エグ味について、以下の方法で8人の社内パネラーを用いて官能評価を行った。実施例1、2、5、7~12のホップエキス酸化反応物については原料中のα酸、イソα酸、β酸合計50ppmからの酸化反応物生成相当量となるように、比較例についてはα酸、β酸、イソα酸が合計50ppmとなるように、それぞれ10mMクエン酸バッファーpH5.5に添加し、サンプルとした。官能評価はサンプル数mLを口に含み、評価基準に従い評価した。結果は8名の評価点の平均値として求めた。[評価基準][評価結果]その結果、実施例1、2、3、5、7~12で得られたホップエキス酸化反応物について苦味エグ味が大きく低減しており、飲用に適した香味であることが示唆された。具体的には、OxiFr1/α酸イソα酸が重量比で01以上またはβ1β2β3β4/β酸が重量比で03以上またはOxiFr2/β酸が重量比で20以上であるホップエキス酸化反応物実施例はそうでないホップエキス比較例に比べ、苦味エグ味が低減していることが示された。また、ピーク面積比率で評価した場合、HPLC分析での総ピーク面積に対するα酸、イソα酸、β酸のピーク面積比率が50以下であるホップエキス酸化反応物実施例はそうでないホップエキス比較例に比べ、苦味エグ味が低減していることが示された。実施例14:ホップエキス酸化反応物の脂質吸収抑制作用の評価実施例1で得られたホップエキス酸化反応物の脂質吸収抑制作用を、ラットへの脂質エマルジョン単回投与試験によって評価した。ラットにおける脂質エマルジョン吸収の測定試験は、すでに報告された方法Int.J.Obes.Relat.Metab.Disord.25,1459-14642001に従って以下の通りに実施した。つまり、脂質エマルジョンはコーン油6ml、コール酸80mg、オレイン酸コレステリル2g、蒸留水2mlを混合し、超音波処理により調製し、16時間絶食後の8週齢の雄性Wistarラット日本チャールズリバーに10ml/kg体重になるように胃ゾンデを用いて経口投与した。実施例1で得られたホップエキス酸化反応物投与群では、投与量が1000mg/kg体重になるように、脂質エマルジョン調製時にホップエキス酸化反応物を混合した。脂質エマルジョン投与前、及び投与後1、2、3、4、5時間後のそれぞれに尾静脈より採血し、定法に従い血漿を調製し、血漿中の中性脂肪濃度をトリグリセライドEテストワコー和光純薬により測定した。その結果、対照群では投与後1~3時間で血漿中中性脂肪濃度の増加が見られたのに対し、ホップエキス酸化反応物投与群では血漿中中性脂肪濃度の増加が投与後1~2時間で有意に抑制された図9:ホップエキス酸化反応物の脂質吸収阻害作用;ホップエキス酸化反応物は1000mg/kg体重で脂質エマルジョンと同時投与。:P<0.05、:P<0.01Control群と比較;投与前後の血中中性脂肪濃度を平均値±標準偏差で表示した。。以上の結果から、ホップエキス酸化反応物は脂質の吸収を抑制する作用を持つことが確認された。中性脂肪は小腸で膵リパーゼにより分解され吸収される。そこで膵リパーゼ活性が中性脂肪の吸収に大きく寄与するためホップエキス酸化反応物の膵リパーゼ活性阻害作用を評価した。実施例15:ホップエキス酸化反応物の膵リパーゼ活性阻害作用の評価実施例1で得られたホップエキス酸化反応物の膵リパーゼ活性阻害作用を評価した。膵リパーゼ活性の測定はすでに報告された方法J.Agric.FoodChem.,53,4593-45982005に従って以下の通りに実施した。測定試薬には4-methylumbelliferyloleateシグマアルドリッチを使用し、酵素源にはブタ膵リパーゼシグマアルドリッチを、1検体当たり10U使用した。実施例1、2、3、5、7~12で得られたホップエキス酸化反応物は4ジメチルスルホキシドを用いて所定の固形分濃度ホップエキス由来酸化成分濃度に溶解し、試験に供した。活性は4ジメチルスルホキシドのみを添加した場合に得られる酵素活性を100として表示した。その結果、実施例1で得られたホップエキス酸化反応物は膵リパーゼ活性を阻害し、終濃度80.5μg/mlで添加した時に約50までリパーゼ活性が低下した図10:ホップエキス酸化反応物の膵リパーゼ阻害活性;平均値±標準偏差。以上の結果から、ホップエキス酸化反応物が膵リパーゼ活性の阻害作用を持つことが確認された。次に、実施例2、3、5、7~12で得られたホップエキス酸化反応物について同様に膵リパーゼ活性阻害作用を評価した。また、比較としてイソα酸の膵リパーゼ活性阻害作用についても評価した。イソα酸の測定には異性化ホップエキスIsoExtract30;hopsteiner社製を使用した。測定の結果、実施例2、3、5、7~12で得られたホップエキス酸化反応物はすべて膵リパーゼ活性を阻害し、終濃度29.2~105.8μg/mlで添加したときに約50までリパーゼ活性が低下した。一方、イソα酸は終濃度296μg/mlで添加したときに約50までリパーゼ活性が低下した図11:ホップエキス酸化反応物の50膵リパーゼ活性阻害濃度IC50。以上の結果から、ホップエキス酸化反応物は原料ホップエキスや粉末化基材の種類を問わず、全て膵リパーゼ活性の阻害作用を持つことが確認され、活性の力価についてもイソα酸よりも強いことが示された。実施例16:ホップエキス酸化反応物のアルカリ金属塩水溶性製剤化実施例7で得られた粉末状ホップエキス酸化反応物基材FD101、80°C24時間加熱5gを50°Cに加温した0.2M水酸化ナトリウム水溶液25mLに加え、よく攪拌した。得られた溶液をろ過して基材のセルロースを除き、茶褐色透明のホップエキス酸化反応物のナトリウム塩水溶液を得た。得られた水溶液を希釈し、実施例4記載の方法で分析した結果を図12に示す。ホップエキス酸化反応物を水溶化した製剤が得られていることが確認された。実施例17:ホップエキス酸化反応物中のβ1~4成分の構造解析17-1:β1およびβ2の分析実施例4の記載に準じてホップエキス酸化反応物のHPLC分析を行い、β1およびβ2を分取精製し、精密質量測定が可能な質量分析装置による分析、1H-NMR測定および13C-NMR測定を実施した。その結果、β1は式Iで表されるHydroxytricyclocoluponeepimerBのいずれかの化合物、またはその混合物であり、β2は式IIで表されるHydroxytricyclocoluponeepimerAのいずれかの化合物、またはその混合物であることが同定された。なお、図13に示される通り、β1およびβ2は、C4位の立体配置が異なる立体異性体の関係にある。β1β2β1に関する質量分析、1H-NMR測定および13C-NMR測定の結果は、以下の通りであった。β1質量分析:HRESIMSmz4152494MH1H-NMRおよび13C-NMRβ2に関する質量分析、1H-NMR測定および13C-NMR測定の結果は、以下の通りであった。β2質量分析:HRESIMSmz4152496MH1H-NMRおよび13C-NMR17-2:β3およびβ4の分析実施例4の記載に準じてホップエキス酸化反応物のHPLC分析を行い、β3およびβ4を分取精製し、精密質量測定が可能な質量分析装置による分析を実施した。JAgricFoodChem20095774807489に記載の手法に準じて、β1とのHPLCでの溶出位置の比較を実施した結果、β3はβ1のn及びad同族体であることが示唆された。さらに質量分析を行った結果、β3は、式IIIで表されるHydroxytricycloluponeepimerBおよび式IVで表されるHydroxytricycloadluponeepimerBのいずれか一つまたはそれらの混合物であることが同定された。質量分析結果および式IIIおよび式IVの化学式は、以下の通りである。β3質量分析:HRESIMSmz4292650MH化学式:HydroxytricycloluponeepimerBHydroxytricycloadluponeepimerBまた、同様に、JAgricFoodChem20095774807489に記載の手法に準じて、β2とのHPLCでの溶出位置の比較を実施した結果、β4はβ2のn及びad同族体であることが示唆された。さらに質量分析を行った結果、β4は式Vで表されるHydroxytricycloluponeepimerAおよび式VIで表されるHydroxytricycloadluponeepimerAのいずれか一つまたはそれらの混合物であることが同定された。質量分析結果および式Vおよび式VIの化学式は、以下の通りである。β4質量分析:HRESIMSmz4292651MH化学式:HydroxytricycloluponeepimerAHydroxytricycloadluponeepimerA"