"非結晶性セルロースを分解する酵素と、タンパク質と吸着または結合する担体と、を備え、前記担体が磁性を有した酵素複合体。前記酵素が、エンドグルカナーゼ、セロビオハイドロラーゼ、βグルコシダーゼまたはそれらに類する酵素であり、また、それらの混合物であることを特徴とする請求項1の酵素複合体。前記担体が、カーボンナノチューブCNTであることを特徴とする請求項1の酵素複合体。しかしながら、前記従来の酵素複合体では、実用化できる酵素活性を達成することができていない、活性評価するために遺伝子の抽出からタンパク質の作製までにコストおよび数週間以上の時間がかかる、セルロース糖化後、セルロソームを回収できないためバイオエタノール作製にかかる酵素コストが増加する、といった課題を有していた。本発明は、前記従来の課題を解決するもので、従来のセルラーゼを利用し簡便に糖化活性を向上でき、簡易的にセルラーゼを回収することが可能な酵素複合体を提供することを目的とする。前記従来の課題を解決するために、本発明の酵素複合体は、非結晶性セルロースを分解する酵素と、タンパク質と吸着または結合する担体と、を備え、前記担体が磁性を有し、セルロースの糖化を行う。本構成によって、セルロースを効率よく糖化し、さらに、担体が磁性を有することでセルラーゼの回収を容易にすることができる。本発明の酵素複合体によれば、セルロースを効率よく糖化することができ、さらにセルラーゼの回収を容易にすることができる。以下本発明の実施の形態について、図面を参照しながら説明する。図3は、3つのセルラーゼが共同しながらセルロースをグルコースへ糖化するメカニズムを示す。例えば、aはエンドグルカナーゼであり、bはセロビオハイドロラーゼであり、cはbグルコシダーゼである。一般的にセルロースはグルコースが1,4-b結合することで直鎖的な結合を有し、それゆえセルロース鎖同士が水素結合により強固に結合している結晶構造。それゆえ、セルロースは水に不溶で、酵素などで糖化されにくい。しかし、セルロース鎖の一部は非結晶構造となっており、水分子が入り込める構造が存在する。エンドグルカナーゼはその非結晶構造へアタックし、セルロース鎖を切断する。次に、セロビオハイドロラーゼが切断されたセルロース鎖の末端からセルロース鎖をセロビオース単位に分解する。最後に、グルコシダーゼがセロビオースを分解することにより、グルコースが生成される。このように、セルロースは主に3種類のセルラーゼによってグルコースに糖化される。図4は、従来のセルロソームの構成を示した図である。骨格タンパク質105はコヘシンとドックリンというタンパク質から成り、リンカー107によりセルラーゼの酵素活性部位108、109および110と結合している。セルロース結合モジュール106は、セルロースの表面に結合するタンパク質である。セルロソームは、セルロース結合モジュール106によりセルロース表面へ結合し、酵素活性部位108、109および110がセルロースをごく近場にてグルコースへ糖化する。実施の形態1図1は、本発明の実施の形態1における酵素複合体の構成図である。図1において、セルラーゼ101、102および103は、エンドグルカナーゼ、セロビオハイドロラーゼ、およびβグルコシダーゼまたはそれらに類するセルラーゼのいずれかである。カーボンナノチューブ104は、単層または複層が存在するが、好ましくは単層である。カーボンナノチューブ104は、CNTと略されることもある。CNT104は、単層または複層であるが、好ましくは単層であることがよい。前記セルラーゼ101、102および103が混在した溶液とCNT104を混合し、物理的に吸着させる。物理的な吸着により、セルラーゼ101、102および103はランダムにCNT104上に吸着する。セルラーゼ101、102および103がCNT104上にランダムに吸着することにより、図3に示すごとくセルラーゼが共同してセルロースをグルコースに糖化する作用がCNT104上にて連続的に行われ、糖化効率が向上することになる。かかる構成によればセルラーゼ101、102および103がランダムにCNT104上に吸着することにより、セルロース鎖と極めて近い反応場にて接触することとなり、セルロース鎖を連続的にグルコースまで糖化することができるため、糖化効率を向上することができる。なお、本実施の形態において、CNT104とセルラーゼ101、102および103は物理的吸着としたが、CNT104へ化学的な修飾を施し、セルラーゼを固定化しても良い。実施の形態2図2は、本発明の実施の形態1の酵素複合体の別の形態を示す図である。図2において、図1と同じ構成要素については同じ符号を用い、説明を省略する。実施の形態1においては、セルラーゼ101、102および103が混在した溶液とCNT104を混合し、複合体を形成したが、図2のように、セルラーゼ101、102および103を各々CNT104と混合し複合体を形成した後、混在させてもよい。実施例セルラーゼ101,102および103の混合溶液として、セルラーゼシグマアルドリッチ社製、品番C8546を用いた。CNT104として、単層カーボンナノチューブKHケミカル社製およびラテックスビーズDukeScientificCorporationを用いた。反応溶液として、pH5.0のクエン酸バッファーを用いた。セルロースとして、AvicelPH-101シグマアルドリッチ社製を用いた。濃度が2mgmLおよび体積パーセントで20となるように、セルラーゼおよびCNTを調製し、室温において一晩揺動混合しながら、セルラーゼとCNTを吸着させた。セルロースを2gmLとなるように調整し、セルラーゼCNT混合溶液を等量ずつ500uL:500uL混合し、37度において1時間糖化反応した。反応溶液に含まれるセルラーゼを失活するため、98度にて15分間、反応溶液を熱処理した。反応溶液の上澄みを回収するため、反応溶液を1.5mLチューブに入れ、12500rpmで10分間遠心した。さらに、上澄みを0.2umフィルターへ通し、通った上澄みを用いて含まれるグルコース量を測定した。グルコース量の測定には、グルコースアッセイキットフナコシ社を用い、プロトコールに従って行った。図5に、測定結果を示した。ラテックスビーズでは、コントロールcontと同程度のグルコース生産量であるのに対し、CNTでは最大で2.4倍量のグルコースが産生されていることがわかった。図6に、CNTとセルラーゼの複合体と磁石ネオジウムの相互作用を示した。セルラーゼが吸着したCNTが、ネオジウム磁石へ吸引されている様子が確認された。"