"アスパラガス苗の生育を促進する作用を有するPhialocephalafortiniiに属する菌。前記Phialocephalafortiniiに属する菌は、FERMAP-22158平成23年7月27日に独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センター受領であることを特徴とする、請求項1に記載のPhialocephalafortinii菌。請求項1又は2に記載の菌を含有することを特徴とする、資材。請求項3に記載の資材を含有することを特徴とする、培土。請求項4に記載の培土にアスパラガス種子を播種し、そして育苗することを特徴とする、アスパラガス苗の製造方法。請求項5に記載の製造方法により製造されたアスパラガス苗。請求項1又は2の菌株をアスパラガス苗に接種することを特徴とする、アスパラガス苗の生育を促進する方法。そこで、上記従来技術のようにエンドファイトを用いることによって、アスパラガス苗の生育の阻害要因となる病害を防除することが考えられる。しかし、それによってたとえ病害を防除することができるとしても、アスパラガスの迅速且つ効率的な生育という上記観点から、アスパラガス苗の生育に悪影響を与える場合、或いは生育の促進が見られないといった場合には、採用することは到底できない。さらには、エンドファイトは、宿主に対する特異性が無く、そしてすべての植物を宿主とすることができるものの、その反面、宿主の種類によって定着率が異なっている。そのため、ある植物に対していずれのエンドファイトを使用したときに、アスパラガス苗の生育をより促進し得るかどうかを予測することは決して容易ではない。そうではあっても、アスパラガス苗の生育を促進し得るエンドファイトを見出すことは、アスパラガスの生産性の向上という点において、重要な意義をもつものである。従って、本発明は、アスパラガス苗に対してより高い生育促進効果を付与し得るエンドファイトを見出すことを主たる課題とした。そこで、本発明者は、アスパラガス苗に対して、高い生育促進効果を付与する菌株を求め、鋭意研究した。その結果、種々のエンドファイトのうち、Phialocephalafortiniiに属する菌に、その効果を有しているものが存在することを新規に見出し、これをスクリーニングすることに成功した。そして、その中でも、特に高い生育促進効果並びに高い病害防除効果の双方を併せもつ菌株を見出し、本発明を完成したものである。即ち、本発明は、アスパラガス苗の生育を促進する作用を有するPhialocephalafortiniiに属する菌に、好ましくは、FERMAP-22158株平成23年7月27日付け独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センター受領に関する。また、本発明は、前記菌株を含有することを特徴とする、資材、及び前記資材を含有することを特徴とする、培土にも関する。また、本発明は、前記培土にアスパラガス種子を播種し、そして育苗することを特徴とする、アスパラガス苗の製造方法、及び前記製造方法により製造されたアスパラガス苗にも関する。さらにまた、本発明は、アスパラガス苗の生育を促進する作用を有するPhialocephalafortiniiに属する菌、好ましくは、FERMAP-22158株をアスパラガス苗に接種することを特徴とする、アスパラガス苗の生育を促進する方法にも関する。上記の観点から、本発明者は、主として、アスパラガス苗の環境ストレス耐性並びに生育促進効果の付与を目的として、エンドファイトの中からこれら効果を有する菌株を特定した。具体的には、貧栄養条件の森林土壌よりエンドファイト菌を採取し、人工培地上で2ないし3週間インキュベートすることにより、コロニーを生育させる。そして、それぞれのコロニー上に、アスパラガスの発芽種子を播種し、2週間インキュベートした後、生育したアスパラガス苗のバイオマス量を測定する。このバイオマス量の増加が大きいものほど、アスパラガス苗の生育を促進させる効果がより高いものと言うことができる。その結果、試験が行われた種々のエンドファイトのうち数種の菌については、バイオマス量の増加が有意に目立つことが見出された。そこで、かかる菌株を形態学的特徴および分子生物学的特徴により同定したところ、いずれもPhialocephalafortiniiに属する菌であることが判った。また、菌株の病害防除効果については、例えば下記のように行う。菌株を培地上で培養し、形成したコロニー上に、発根させたアスパラガス種子を播種し、ある程度育苗させて苗とする。また一方で、病原菌を培養した培地を用意しておき、かかる病原菌培地上に、前述のアスパラガス苗を培地ごと乗せ、さらに育苗する。育苗後、アスパラガスの葉及び茎の変色を観察することによって、発病度を決定し、その数値に応じて菌株の病害防除効果を判断する。次に、このスクリーニングにより得られた菌株が有する生育促進効果について、実利用を考えより詳細に確認を行う。まず、例えば穀物粒などの接種源に、該スクリーニングされた菌株を接種する。およそ1カ月間の培養によって、穀物粒は菌糸に覆われる。そして、この菌糸塊を室温で乾燥させた後、粉砕しておよそ粒径2mm以下に粉末化する。次に、接種源としての菌糸粉末が有する生育促進効果の確認をするため、該菌糸粉末を育苗培土に1混合したものにアスパラガスの種子を播種し、播種のおよそ2週間後に病害菌を接種する。そして、育苗を行い、播種のおよそ3週間後及び5週間後の初期生育の度合いを、バイオマス量を測定することによって確認する。このとき、菌糸粉末を混合しない培土を用いた他は同様の条件で育苗を行ったものを対照とする。また、本発明において、資材は、単独で使用することもできるが、適当な固体担体、液体担体、乳化分散剤などを用いて、粒剤、粉剤、錠剤、乳剤、水和剤等の任意の形状で使用できる。また、この当該資材を無機肥料、有機肥料、除草剤、土壌等と共に使用し、肥料、土壌改良資材、育苗用培土等とすることができる。このとき、単独の資材又は他の原料と混合され得られた製品中には、本発明に係るFERMAP-22158株が、有意にアスパラガス苗の生育を促進し、且つ病害抑制の効果を発揮するに足りる菌数があればよい。例えば、好ましくは104hyphalsegmentsg以上である。本発明によって、アスパラガス苗に対してより高い生育促進効果を付与するとともに、病害防除効果も付与される。実施例1エンドファイトの選抜試験茨城大学農学部資源生物科学科微生物生態学研究室においてDSEDarkseptateendophyticfungiとして分離保存されている8種20菌株未同定を含むを試験に供した表1。また、試験に用いたアスパラガス品種は、ウェルカムサカタのタネを用いた。培地には窒素源として有機の液肥ネイチャーエイドサカタのタネ表2を希釈ろ過滅菌したものを使用したNAOM培地表3を用いた。※ネイチャーエイド以外の試薬を9333mlの純水に溶かし、オートクレーブ121°C、15分にかけ人肌程度まで冷ました後、ろ過滅菌したネイチャーエイドを加え50mmシャーレに分注し、固化させた。上記表1に記載されるDSE分離菌株の各々を、表2に示した組成のNAOM培地上でコロニーが培地を覆う程度まで培養し、形成したコロニー上に、表面殺菌し無菌的に発根させたアスパラガス種子3粒を移植した。その後、この発根させたアスパラガス苗を培地ごと、滅菌したプラスチックポット直径約8cm、高さ約10cmに入れ1週間育苗した。また一方で、15WA培地上で病原菌Foxysporumをコロニーが培地を覆う程度まで培養し、この培地上に、前述の1週間育苗したアスパラガス苗をOM培地ごと乗せ、再度プラスチックポットに入れ3週間育苗した。WA培地は栄養素がほぼ無いため、分離菌株は上部のNAOM培地へと菌糸を伸ばし、アスパラガス苗根部に接触した。育苗は全て屋内の育苗棚で室温約23°C、明期16時間暗期8時間、光合成光量子束密度約65μmol2s1の条件で行った。NAOM培地上に直接播種し1週間育苗後、同様に病原菌接種培地に乗せ3週間育苗したものを対照区とした。育苗後、各処理区の苗の発病程度を指数化して記録し、以下の計算式に従い発病度を算出した。また対照区の発病度からDSE処理区の防除価を算出した。発病指数0;病徴なし、1;茎先端が黄化した状態、2;茎の変色が進み、擬葉が少なくなった状態、3;茎全体が変色し、擬葉がほぼ無い状態、4;枯死もしくは発芽していない状態さらに苗地上部の乾燥重量を測定した。試験は各処理区5反復で行った。高い防除価、並びに乾燥重量を示すものほど、アスパラガス苗に対してより高い病害防除効果、並びに成長促進効果を付与するものであるといえる。その結果、Phialocephalafortiniiの3菌株がアスパラガス苗の生育が対照区に比べ、乾燥部重量がより増加し、且つ高い防除価を示したこれら3菌株をそれぞれ、A、B及びCとする。そして、これら3菌株のうちでも、最も大きい地上部乾燥重量の増加を示し、且つ、最も低い発病度防除価を示した菌株BをLtPE2と命名し、本発明に係る菌株とした。図1においても示されるように、対照区のアスパラガス苗の根部があまり伸長せず褐変していたのに対し図1中のA、PhialocephalafortiniiLtPE2株処理区の根部は培地全体に伸長し褐変も見られなかった図1中のB。なお、上記LtPE2株は、平成23年7月27日付けで、独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センター受領受領番号:FERMAP-22158されている。結果を下記表4にまとめた。実施例2Phialocephalafortiniiを利用したアスパラガス育苗法の開発15麦芽エキス培地で、上記実施例1で選抜したPfortiniiLtPE2菌株を振盪培養した。菌体を回収し、滅菌したフードプロセッサで粉砕し菌糸片懸濁液18×106菌糸片mlを作成した。大麦を一晩蒸留水に浸し、オートクレーブ121°C、30分にかけた。室温に置き、さました後、菌糸片懸濁液05mlを加え封をしてチャンバー内22°C、暗所で3週間培養した。培養後、クリーンベンチ内で十分に乾燥させ、滅菌したフードプロセッサで粉砕し接種資材を作成した。培養ポット高さ10cmにセル培土TM1タキイを20ml入れオートクレーブ121°C、60分にかけた。接種資材を1、10vvになるように加えよく混和して1週間チャンバー内22°C、暗所に静置した。アスパラガス種子cv.ウェルカムサカタのタネを表面殺菌した後、寒天培地上で無菌的に発根させ、ポットに播種した。他方、大麦をフードプロセッサで粉砕しオートクレーブ滅菌したものを加えた培土を対照区として用いた。滅菌水を1週間ごとに加えた。播種2及び3週間後に苗を回収し地上部乾燥重量の測定および根部からのPfortiniiの再分離を行った表5及び6参照。接種資材濃度10区では播種2週間目に、病原菌Foxysporumfspasparagi胞子懸濁液59×106mlを10ml加えた。病原菌接種3週間後に、苗を回収し病徴を確認し乾燥重量を測定した表7参照。乾燥粉末を接種源とした培土に混和1,10vvし育苗試験を行った結果、両密度とも約30の定着率があり、エンドファイト処理区苗では対照区に比べ宿主バイオマスが増加し、1混和処理区で最大117増加した。また、病害防除試験を行ったところ、エンドファイト処理区で病原菌接種3週間後に防除価92を示した。以上の結果より、PfortiniiLtPE2株FERMAP-22158を用いたことによって、アスパラガス苗に対して、成長促進効果及び病害防除効果が付与されることが示され、そして、アスパラガスが圃場において効率的に生産され得ることが期待される。"