豚病会報

No.50

2007

1
豚のレプトスピラ症の現状と対策

菊池
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直哉（酪農学園大学獣医学部獣医伝染病学教室）

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１．はじめにて巻き付き、それらをエンベロープが包む。暗視野顕

レプトスピラ症は、病原性レプトスピラの感染による発熱、黄疸、出血、血色素尿、蛋白尿を主徴とする

微鏡により回転および屈折により活発に運動する菌体が観察される。

人獣共通感染症の１つで、動物同士はもちろん、動物レプトスピラは、遺伝学的な性状から１３菌種と５遺から人にも感染する病気である。病原性レプトスピラ

伝子種に分類され、これらの菌種はさらに２８種の血清はネズミなどの各種保菌動物の腎臓に保菌され、尿中群と２５０種以上の血清型に型別されている（表１）。に排出される。動物は尿で汚染された水や土壌から経皮的あるいは経口的に感染する7)。

酸性条件下や熱、乾燥には弱いが、中性あるいは弱アルカリ性の淡水中や湿った土壌中では長期間生存可

本症は「家畜伝染病予防法」により牛、豚、犬など
を 対 象 に し て、Pomona、Canicola、Icterohaemor-能である。消毒薬や多くの抗生物質に対しては感受性を示す。

rhagiae、Hardjo、Grippotyphosa、Autumnalis、Australis の７血清型による疾病が届出伝染病に指定

３．疫学されている。さらに、人の動物由来感染症に対する対

１） 生態策強化の目的で２００
３年に「感染症予防法」が改正され、レプトスピラ病はネズミなどのげっ歯類をはじめと人のレプトスピラ症は４類感染症（動物、飲食物などする多彩な野生動物、家畜および人に感染する。感染の物件を介して人に感染し、国民の健康に影響を与えした動物が耐過すると、レプトスピラは腎臓の尿細管るおそれがある感染症として定められている感染症）に局在し、尿中に排菌される。本菌によって汚染されに指定された。

た地表水や湿った土壌あるいは敷わらや飼料にヒトや家畜が接触することにより、皮膚や粘膜（特に創傷な２．原因どがある場合）から感染する。特にドブネズミなどのレプトスピラはスピロヘータ目に属し、グラム陰性、好気性、直径０．
１m、長さ６〜２０m の細長いコイル

げっ歯類は、レゼルボアとして人や家畜への感染に重要な役割を果たしている（図１）。

状で、細胞の先端が鈎状に屈曲している。菌端部より発した軸糸（ペリプラスム鞭毛）が菌体中央に向かっ表１㊁↢േ‛

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図１

レプトスピラの感染環

2Proc Jpn Pig Vet Soc No.50 2007
（レプトスピラ尿症）。野生動物では不顕性感染し長期

２） 感染動物
レプトスピラに感染する動物は、クマネズミ、ドブにわたり尿中に排菌するものが多く、げっ歯類の場合、ネズミなどのげっ歯目、キツネ、スカンク、タヌキなほぼ一生涯にわたって排菌する。家畜でも不顕性感染

どの食肉目、モグラ、チンパンジーなど、その他の野が多いが、慢性感染症の形を取るものもある。排菌期

生動物やトカゲ、カエル、魚類など、計１２０種以上にも間は動物種により異なり、牛で数週間、豚で数カ月か及ぶ。さらに、牛、豚、馬などの家畜や犬などの伴侶ら１年以上、犬で数年程度である。

動物も感染する。この中で、ネズミ等のげっ歯類が本

４） 動物間の感染環菌のレゼルボアとして最も重要な役割を担っている。

レプトスピラは水中や湿った土壌中で長期にわたりこれらの動物はいったん感染すると長期間レプトスピ生存可能であるので、保菌動物の尿により水田、川、ラを腎臓に保有するので保菌率が高い。一方、家畜の池、地表水、土壌、餌場などの生息環境が汚染され感保菌期間はネズミ類と較べ短く、動物種により異なる。

染の場となる。そこに来たネズミなどのげっ歯類、野レプトスピラの血清型は多数報告されている。各種生動物、幼若動物や未感染動物は感染する。このよう動物はさまざまな血清型の菌に感染するが、ある血清にして環境が汚染され野生動物を中心とした感染環が型は特定の動物種に感染することが多い。例えば、家成立する。人はそのような環境中に立ち入ることによネズミと Icterohaemorrhagiae および Copenhageni、り感染する。

野ネズミと Grippotyphosa、犬と Canicola、豚と Pomona は密接な関係にある。わが国ではネズミ類、牛、犬などから１０血清型のレプトスピラが分離されている
（表２）。
表２

４．豚のレプトスピラ症
動物の種により感染するレプトスピラの血清型がある程度限定され、地域的にも異なることがある。原因

わが国で分離されたレプトスピラ‫ⴊޓ‬ᷡဳ
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2[TQIGPGU#WVWOPCNKU#WUVTCNKU*GDFQOCFKU-TGOCVQU$CVCXKCG,CXCPKECੱ㧗㧗㧗㧗㧗㧗㧗ኋਥኅ⇓›››slava、Canicola、Tarassovi、Sejroe、Icterohaemorr-㊁↢േ‛ࠗࠛࡀ࠭ࡒࠗࠛࡀ࠭ࡒࠗࠛࡀ࠭ࡒ‐࡮› ࡂ࠲ࡀ࠭ࡒ‐࡮› ࠗࠛࡀ࠭ࡒ‐࡮› ࡂ࠲ࡀ࠭ࡒ‫ޓޓ‐ޓ‬㧗‫ޓޓޓޓ‬となる主なレプトスピラの血清型は Pomona、Bratihagiae などであり、それらの中でも Pomona が最も広く分布する。症状は種によって異なるが、一般的にどの動物種でも不顕性感染し発症する例は少ない5)。しかし、豚が感染すると尿中に大量かつ長期間（１年以上）排菌することから、他の豚の感染源となると同時に、公衆衛生的にも重要な疾病である6)。
１） 日本における豚のレプトスピラ症の発生状況

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３） 動物におけるレプトスピラの感染、増殖、排菌
感染経路：レプトスピラによって汚染された地表水や湿った土壌あるいは敷きわらや飼料に家畜が接触す

豚のレプトスピラ症は臨床所見に乏しいので、発生状況を把握するのが困難である。しかし妊娠豚の場合、流死産を呈するので、異常産と本症を関連性させて血清学的に調査されている。

ることにより、表皮および粘膜から感染する。創傷あわが国における豚のレプトスピラ症に関する最初のるいは切傷があればより感染しやすくなる。その他、報告は、１９５６年から５８年にかけて実施された全国的な経口感染や眼結膜、生殖器を介して感染する。

血清学的調査で、３，０６０頭中３３４頭（１０．
９％）が陽性を増殖と排菌：生体内に侵入したレプトスピラは血中示し、本症の浸潤が初めて明らかにされた15)。血清型に入り急速に増殖し、レプトスピラ血症を起こす。モ

別では Icterohaemorrhagiae に陽性を示した豚が最もルモットあるいはハムスターの場合、血中のレプトス多く、次いで Autumnalis、Canicola であった。異常産

ピラはさらに増殖し死亡する。一方、ネズミの場合は、との関連の調査で、愛知県においては１９７８年に一養豚

レプトスピラ血症後、抗体が出現するとともにレプト場において２８２例の分娩中４３例（１５．
２％）で早死産が認

スピラは急速に血中から消失し、抗体の影響を受けなめられ、血清学的に Canicola による感染であることがい腎の尿細管に定着する。この間、ネズミには症状が裏付けられた10)。さらに１９８２年 Hebdomadis 感染例も現れず、死亡することもない（不顕性感染）。レプトス

報告された10)。１９９６年から１９９７年にかけての群馬県とピラはそこで増殖し尿中に長期にわたって排菌される

千葉県の流死産例では Copenhageni、Icterohaemor-豚病会報

No.50

20073

rhagiae、Canicola に対して高い抗体価が確認された12)。

も実施されている。愛媛15)、岡山、茨城、愛知、沖縄

２００２年岡山県においては Australis などによる異常産など1〜3) で実施され、Canicola、Hebdomadis、Ictero-が報告されている1)。さらに、沖縄県においては、１９９３haemorrhagiae、Australis、Pomona、Ballico などの浸年から１９９５年の間に認められた異常産３９例中レプトス潤が報告された（表６）。１９５０年代以降全国的な調査がピラが関与した例が１１例、その疑いがあるもの１
１例認

実施されていなかったが、２００
１年から２００
４年にかけてめられ、レプトスピラも分離されている11)。本県にお全国的な調査が再度実施された13)。その結果、血清型

いては、レプトスピラ感染症の発生は現在でも継続しBratislava の陽性率が最も高く、次いで、Australis、ており14)、長期化していることが伺える（表３）。さらAutumnalis、Canicola であった。Bratislava についてに異常産を呈した胎児の広域的な調査では７
３例中２６例はこれまでほとんど報告がなかったが、わが国においが PCR 法により陽性を示し、体液から血清型 Pomonaて高率かつ広範囲に浸潤していることが明らかとなっ等に対する抗体が検出され（表４、５）、レプトスピラた。本血清型は北米、ヨーロッパ等で広く分布しておが流死産に大きく関与していることが確認された 8)。

り、早流産例も報告されている4,9) ので、今後注目すべ

一方、異常産とは関わりなく健康豚の血清学的調査
表３き問題と思われる。

日本における早死産を主徴とした豚のレプトスピラ症の発生例⋵ ⺞ᩏᐕਥߚࠆⴊᷡဳᗲ⍮ ᐕ%CPKEQNC+EVGTQJCGOQTTJCIKCG#WUVTCNKU#WVWOPCNKUᐕ*GDFQOCFKU⟲㚍 ᐕ%QRGPJCIGPK%CPKEQNC
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表４PCR による豚胎児の腎からのレプトスピラ特異遺伝子の検出⋵⢝ఽ೎Უ⽋೎ㄘ႐೎㕍᫪㧔㧕㧔㧕㧔㧕ችၔ㧔㧕㧔㧕㧔㧕⨙ၔ㧔㧕㧔㧕㧔㧕ᗲ⍮㧔㧕㧔㧕㧔㧕㐳ፒ 㧔㧕 㧔㧕㧔㧕ᾢᧄ㧔㧕㧔㧕㧔㧕ችፒ 㧔㧕 㧔㧕 㧔㧕㣮ఽፉ 㧔㧕 㧔㧕㧔㧕ᴒ✽㧔㧕㧔㧕㧔㧕⸘㧔㧕 㧔㧕 㧔㧕࡟ࡊ࠻ࠬࡇ࡜㓁ᕈଏ⹜ᢙ㧔㧑㧕表５

豚流産胎児体液からのレプトスピラ抗体の検出（２０００年〜２００４年）

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4

Proc Jpn Pig Vet Soc No.50 2007
表６⋵ᗲᇫጟጊ⨙ၔ‫ޓޓޓ‬ᗲ⍮ᴒ✽⺞ᩏᐕᐕᐕᐕᐕᐕᐕ

わが国における豚のレプトスピラ抗体の検出（健康豚）ਥߚࠆⴊᷡဳ*GDFQOCFKU%CPKEQNC+EVGTQJCGOQTTJCIKCG#WUVTCNKU%QRGPJCIGPK+EVGTQJCGOQTTJCIKCG$CNNKEQ#WUVTCNKU%QRGPJCIGPK%QRGPJCIGPK$CNNKEQ2QOQPC+EVGTQJCGOQTTJCIKCG%QRGPJCIGPK*GDFQOCFKU$CNNKEQ2QOQPC+EVGTQJCGOQTTJCIKCG%QRGPJCIGPK2QOQPC‫ޓ‬２） 臨床および病理所見

幼若モルモットの皮下あるいは腹腔内に血液、尿あ

すべての年齢の豚で感染する。

るいは死亡した動物の場合は腎などの臓器乳剤を接種

ほとんどの血清型は類似の症状を示すが、多くの場する。毎日体温を測定し、レプトスピラ血症を示す有合、軽度の症状か不顕性感染にとどまる。幼若豚の多熱期の血液から菌を分離する。

くは臨床症状が認められ、発熱（０．
５〜１．
５℃ 上昇）、

蘯

食欲不振、結膜炎、黄疸、血色素尿、痙攣などの神経PCR 法が用いられている。微量の血液、尿、臓器乳症状を呈する。非妊娠豚の場合、一般的に軽症で、症剤などの試料からレプトスピラの特異的な DNA 断片状が不明瞭である。

を増幅する方法であり、高感度、迅速、多検体処理が遺伝子診断

妊娠豚が感染しレプトスピラ血症を起こすと、菌は可能な信頼性の高い方法である。プライマーとしてレ胎盤を経由して胎児に移行する。その結果、発症後１４プトスピラ特異的な鞭毛あるいは 16S rDNA などの遺〜３０日で流死産あるいは新生児障害を起こす。妊娠の伝子配列が用いられている。

時期により経過が異なり、妊娠の前半 1/3 期以内の感盻

染では胎児の発育阻止は見られないが、最終 1/3 以内

特異抗体は感染１週間以降から出現し、３〜４週でに感染すると流産や死産が起こる。流産時には胎児の最高に達するので、発症期と回復期のペア血清を用い体液や組織中にレプトスピラが検出される。流産は血る。顕微鏡凝集反応（Microscopic Agglutination Test,

清 型 に よ っ て も 異 な り、特 に Pomona、Canicola、MAT）が最もよく使用される反応であり、標準的なTarassovi は流産の主要な原因菌となる。

方法である。培養菌液を抗原として希釈血清と反応後、血清学的診断

病理学的所見としては腎に白斑がみられ、糸球体と顕微鏡下で凝集の有無を判定する。血清型特異的であ尿細管の変性、リンパ球やマクロファージ等の間質性るので、抗原にはその地域で流行している血清型のも浸潤が認められる。ときには肝の巣状壊死もみられる。のを中心として数種類用いる。凝集価１００倍以上、ある流死産例では死後の組織軟化現象がみられる。体液はいはペア血清で４倍以上の抗体価の上昇が認められた血性で、浮腫や黄疸がみられる。主な組織学的変化は場合、陽性とする。しかし、本法は多数の血清型に属肝と腎尿細管の壊死である。

する生菌を使用すること、判定に熟練を要することな

３） 診断法どから、特定の研究機関でのみ実施されているにすぎ盧

病原体の分離ない。

培養材料として、レプトスピラ血症を呈している急その他、病原性レプトスピラの共通抗原である外膜性の発熱期には血液を、慢性期あるいは保菌動物の場リポ蛋白を用いた ELISA 法などが開発され、スクリー合は、腎尿細管に保菌されているので尿を用いる。流ニング法として応用されている。

産例では胎児の腎、肝などの組織や体液を用いる。菌４） 予防・対策

検索を行うにあたって、抗生物質未使用の個体である死産や早産等の異常産や虚弱子豚の娩出が散発的にこと、臓器の自己融解が進んでいないこと、凍結され発生した場合、レプトスピラ症を疑う。特に、１）パず、４℃ で保存されていること等に留意する。血液あルボウイルス感染症、日本脳炎、オーエスキー病など

るいは尿１〜２滴、あるいは組織１〜２mm3 を液体あの流死産を伴うウイルス感染症に対するワクチン接種

るいは半流動の 5-フルオロウラシル添加 EMJH 培地、を実施している場合、２）抗生物質の飼料添加の有無、Korthof 培地などで、３０℃２週間〜１カ月間培養する。

すなわち、飼料添加を中止後に発生あるいは添加後に盪 動物接種法

発生が治まった場合、３）胎児の菌検索（血液寒天な豚病会報No.502007

ど）を実施しても陰性の場合、４）飼育環境が湿潤、5５．おわりに汚水などにより悪化し、ネズミ等の野生動物の出入り

豚のレプトスピラ症は特徴的な症状もなく、散発的が自由な豚舎の場合、強く疑われる。このような場合に異常産を起こす疾病である。そのために本感染症がは、病性鑑定を行い、レプトスピラ症の確認を行うと侵入しているにもかかわらず、見逃されている例が多同時に、以下の感染拡大防止対策および予防対策を実くあるものと思われる。しかし、本菌が一度侵入する施する。と、生産性は低下し経済的に大きな損失を被る。本菌

盧

ネズミなどのげっ歯類や野生動物の制御に感染すると大量の菌を長期間尿中に排菌し、感染源豚舎あるいは都市部における家ネズミなどを駆逐あになると同時に公衆衛生学的にも重要な問題である。

るいは侵入を阻止することにより人や家畜の生活環境環境衛生の改善に務めることはもちろん、定期的な血のレプトスピラ汚染を防止する。野ネズミなどの野生清学的検査を実施し監視体制を強化する必要があろう。

動物については制御が不可能であるので、それらとの直接的あるいは間接的な接触を極力避けるように心が引用文献ける。

１） 足立吉數ら（２００３）繁殖豚群で見られるレプトス

盪

感染動物の隔離感染が確認された動物はストレプトマイシンを投与

ピラ菌による流早産の防除．食肉に関する助成研究
調査成果報告書、２
１：７３−７８．

すると同時に迅速に隔離する。これらの動物は長期間

２） 足立吉數、小川恭喜（２００４）繁殖豚群で見られるにわたり尿中に排菌しているので、汚染された床、土レプトスピラ菌による流早産の摘発と防除．食肉に壌、器具類は充分に消毒する。流産胎児や胎盤を消毒関する助成研究調査成果報告書、２２：７９−８４．

し適切に処理する。
蘯環境衛生

感染動物の尿からの直接的あるいは間接的な感染を防止するため、飼料や飲水が汚染されないように注意し、環境の消毒と乾燥化につとめる。
盻抗生物質の投与

豚の分娩１ヶ月前から１４日間、５００g/t のオキシテト
ラサイクリンを含有する飼料あるいは分娩２ヶ月前か

３） 足立吉數ら（２００５）レプトスピラ菌感染繁殖豚および育成豚群の全国調査と保菌の疑われる野生動物の調査研究．食肉に関する助成研究調査成果報告書、
２３：７５−８２．
４） Bolin A. C. et al (1991) Reproductive failure
associated with Leptospira interrogans serovar
Bratislava infection of swine. J. Vet. Diagn. Invest.,
3:152-154.

ら１０日間、４００g/t のクロルテトラサイクリン含有飼料

５） Ellis, W. A. (1992) Leptospirosis. p.529-536,

を妊娠豚群に投与すれば、流死産を著しく減少させる

Disease of Swine, 7th ed, Leman, A. D. et al. eds,

ことができる。

Iowa State Univ. press, Berkeley.

眈予防接種

日本においては牛用、豚用のワクチンは認められていない。しかし、欧米諸国では、Pomona、Hardjo、Canicola、Grippotyphosa、Icterohaemorrhagiae など

６） Faine, S (1987) レプトスピラ症防疫指針、
吉井善作
監訳、内田老鶴圃、東京．
７） Faine, S. (1994) Leptospira and Leptospirosis,
CRC Press, Boca Raton.の不活化ワクチンが用いられている。動物用としては

８） 古谷徳次郎ら（２００６）豚の早死産胎児における犬用ワクチンのみが認められており、血清型 Ictero-PCR および抗体検査によるレプトスピラ浸潤調査．

haemorrhagiae あるいは Copenhageni、Canicola さら日獣会誌、５９：４５９−４６３．に Hebdomadis が、他の５種のウイルスと組み合わさ

９） Hathaway, S. C. et al (1981) Serological and

れ７種あるいは８種ワクチンとして用いられている。

bacteriological survey of leptospiral infection in

人用のワクチンとして４血清型混合ワクチン（ワイルpigs in southern England. Res Vet Sci,. 31:169-173.

病と秋疫 ABC）が応用されている。
５） 治療
ストレプトマイシン投与が急性および腎からのレプトスピラ排除に最も有効である。豚では２５mg/Kg ３日間投与で有効である。

１０） 伊藤裕和ら（１９８６）早死産蓋の血清レプトスピラ
抗体価．日獣会誌、３９：３１１−３１４．
１１） 貝賀眞俊（１９９８）沖縄本島北部地域におけるレプト病の疫学調査．豚病会報、３３：１５−１８．
１２） Kazami, A. et al (2002) Serological survey of6Proc Jpn Pig Vet Soc No.50 2007
leptospilosis in sows with premature birth andラ症の血清学的浸潤調査．ｐ１２
３、第１４０回日本獣医stillbirth in Chiba and Gunma prefectures of Japan.

学会学術集会講演要旨集、鹿児島．

J. Vet. Med. Sci. 64:735-737.
１３） 新田芳樹ほか（２００６）レプトスピラ症発生養豚場における疫学調査．第４３回レプトスピラ・シンポジ
ウム講演要旨集．
１４） 菊池直哉ほか（２００５）繁殖豚におけるレプトスピ

１５） 農林水産技術会議事務局（１９６０）家畜のレプトス
ピラ病に関する研究．
１６） 薦田洋司（１９９１）愛媛県における豚のレプトスピ
ラ抗体調査日獣会誌、４４：８５７．