岩獣会報 (Iwate Vet.), Vol. 38 (№ 2), 39−48 (2012).

総説

白金系抗腫瘍薬シスプラチンによる腎傷害の動物種差に関する研究片山要

理恵子１, ２), 永田

沙織２), 飯田紘子２), 山岸則夫１, ３), 古濱

和久１, ２)約白金系抗腫瘍薬シスプラチン ( cis -diamminedichloroplatinum II) で誘発される腎傷害の発現機作を明らかにする目的で, その代謝に係わると考えられる腎皮質cysteine-S-conjugate

lyase (C-S lyase) に着目し,５種の動物を用いて, 種差の観点から解析を試みた. まず, シスプラチンによる腎傷害へのC-S lyaseの関与を明らかにする目的で, 感受性が高いと考えられたラットにC-S lyase阻害薬アミノオキシ酢酸 (AOAA) を前処置し, その後, シスプラチンを単回静注したところ, 腎傷害は明確に軽減された. しかし, 腎皮質白金(Pt) 濃度には変化がみられなかったこのことから, 本傷害にはシスプラチンの未変化体 (parent compound)よりはむしろ, C-S lyaseにより代謝を受けた活性代謝物 (reactive metabolite) の関与が強く示唆された.
次に, シスプラチンの最小腎傷害誘発用量を動物間で比較したところ, ラットおよびネコは高感受性, マウス
およびウサギは低感受性, イヌはその中間であることが判明した. これら感受性の違いはbasal腎C-S lyase活性の違いで説明された. したがって, 腎に高濃度にPtが移行しても, 腎C-S lyase活性が低いと必ずしも重篤な腎傷害発現に繋がらないことが明らかとなった. In vitro 系において, 各種動物の腎由来培養細胞を用いて,シスプラチンの細胞毒性 (cytotoxicity) を調べたところ, 傷害性の強さはC-S lyase含量に依存していた. このことから, 細胞系においてもシスプラチン腎傷害性とC-S lyaseの間に密接な関連があることが示唆された.
以上, シスプラチンによる腎傷害には種差が存在し, その発現には腎へのPtの移行性と腎皮質C-S lyase活性が密接に関与していることが明らかとなった.
キーワード：シスプラチン, 腎傷害, 動物種差, C-S lyase

白金 (Pt) 製剤シスプラチンはヒト医療では肺がん,

ル原子とアンモニア分子が cis 型に配位している [6]前立腺がんや卵巣腫瘍に幅広く使用された抗腫瘍薬でが, 幾何異性にあるtrans型に配位したtransplatinにあるが, その強い腎毒性のため現在では使用が制限さは活性はないと言われている [7]. 作用機作として,れている [1, 2]. 一方, 獣医療では未だ有効な化学標的腫瘍細胞に取り込まれたシスプラチンはaquation

療法剤の一つであり, イヌの骨肉腫では第一選択薬とreactionにより２つのクロール基が水酸基に置換され,して, 扁平上皮がんや膀胱の移行上皮がんでは併用治DNAのニ重鎖に結合して架橋を形成する. 同じDNA

療薬として, 鼻腔内・口腔内腫瘍では放射線治療の増塩基に架橋を形成した場合はDNA adductと言い, 異感剤として, 骨肉腫やメラノーマではインプラントとなったDNA塩基に形成した場合をDNA cross-linkとして使用されている [3, 4]. 投与経路としては通常呼んでいる. シスプラチンは全てのDNA塩基と結合

静脈内投与であるが, 中皮腫やがん性胸膜炎には胸腔・し, 特にアデニンとグアニンに優先的に結合するため,腹腔内投与が有効との報告もある [5].

90%以上はDNAadductを形成し, 腫瘍細胞のDNA

シスプラチン (図１) はPt原子を中心に２つのクロー
１)

岐阜大学大学院連合獣医学研究科

２)

岩大支会, 岩手大学共同獣医学科基礎獣医学分野

３)

岩大支会, 岩手大学共同獣医学科臨床獣医学分野

複製を阻害すると考えられている. 一方では細胞周期― 39 ―

前投与するとシスプラチン腎傷害は軽減されたが, ラッ
ト に C-S lyase 阻 害 薬 AOAA あ る い は ADP 阻 害 薬
bestatinやL-phenylalanylglycineを腹腔内前投与しても軽減が認められなかったという. したがって, GGTのみがシスプラチン腎傷害に関与する酵素であると結図１

論している. 一方ではWainfordら [18, 19] の論文

シスプラチンの化学構造式
分子量：300.05, 化学式：Cl２H６N２Pt

に対する反論として, 近位尿細管刷子縁は障害初期に剥離・脱落し易く, また再生も遅いことから, 重度なに非特異性に作用するとの報告もある [5]. シスプラ

シスプラチン腎傷害の移行にGGTの関与は疑わしい

チンの血中挙動はイヌでは２相性で, 半減期は第１相との意見もある.

で22分, 第２相で５日 [8], 尿中Ptレベルはシスプラ

このように, シスプラチン腎傷害の機作に関しては

チン静注後に直ちに上昇し, ４時間以内に60%が, 48

未だ不明なことが多いため, 本研究では, シスプラチ

時間以内で投与量の76%が尿から検出され, 胆汁へのンの腎内代謝に重要な役割を担っていると考えられる

排泄量はごく微量で [9], 腸管循環は少ないと考えら

腎皮質尿細管上皮内C-S lyaseに着目し, 動物種差のれている.

観点から in vivo および in vitro 系を用いて, 臨床病

有害作用に関しては, イヌでは腎毒性, 悪心, 急性
嘔吐や骨髄抑制であり, ヒトで問題となる聴覚障害や理学的, 薬物動態学的および分子生物学的見地からア
プローチした.

神経障害は稀である [10]. 有害作用の中で, 腎毒性は材料及び方法重篤で, 用量制限因子となっている [5]. 病理組織学的には腎尿細管上皮細胞の変性・壊死が特徴的である.

使用薬物

病理発生としては, 最初に近位尿細管のS３segment

シスプラチン (シスプラチン注 , マルコ製薬, 愛が障害され, 用量 (濃度) 依存的に遠位尿細管や集合

知) は市販のもの (0.5mg/mL濃度) をそのまま使用

管にも障害がみられるという [11]. 反面, ネコでは,した. AOAA (アミノオキシ酢酸ヘミ塩酸塩 , 和光

２40mg/m 投与で腎うっ血とともに重篤な肺水腫およ純薬工業, 大阪) はMilli-Q水 (以下MQ水) で１%にび胸水による呼吸困難が頻発し, 20mg/m２ 投与ではなるように溶解した.

有害作用は見られないものの抗腫瘍効果も得られない使用動物と報告され, 使用禁忌となっている [12],シスプラチンよる腎毒性の発現機作仮説としては, 静

実験には雄性BALB系マウス, 雄性Fischer344系ラッ

注されたシスプラチンが肝臓に取り込まれ, glutathione

ト, 15週齢の雄性NZWウサギ (日本エスエルシー,

S-transferaseによりグルタチオン抱合を受け (Pt-GSH静岡), １−３歳齢の雌雄日本ネコ (体重3.1±0.3kg,

を形成), 一部は腎糸球体で濾過 [13] されるが, 大白石実験動物飼育所, 東京) および２−３歳齢の雄性部分は漿膜側に存在するorganic cation transporters

ビーグル犬 (体重12.5±0.8kg, 第一三共, 東京) を(OCT)２を介して近位尿細管に取り込まれ, 尿細管用いた. マウスは入荷当日に屠殺し, ラットおよびウ

管腔に分泌される [14]. 分泌されたPt-GSHは近位

サギは室温22±３℃, 湿度55±25%, 12時間明暗サイ

尿細管刷子縁に存在する γ-glutamyltranspeptidase

クル (午前８時点灯, 午後８時消灯) の条件下の実験(GGT) やaminodipeptidase (ADP) によりシステイ

動物飼育室で飼育した. 飼育期間中, マウスとラット

ン抱合を受け (cysteine-S-conjugateを形成) 極性がにはマウス・ラット・ハムスター用固形飼料 (MEQ,

高まった結果, 近位尿細管で再吸収される [15]. そオリエンタル酵母工業株式会社, 東京) を, ウサギにの 後 , 上 皮 細 胞 内 に 存 在 す る cysteine-S-conjugate

はウサギ・モルモット用固形飼料 (ラボ R グロワー,-lyase (以下C-S lyase) によりC-S結合が切断され

日本農産工業株式会社, 神奈川) を, ネコおよびイヌ

反応性に富んだチオール化シスプラチン, すなわち活は, 室温22℃前後の動物飼育室で一定の照明サイクル

性代謝物 (反応性代謝物) が生成されるという [15].

条件下 (午前８時点灯, 午後６時消灯) で飼育し, 市

このチオール化シスプラチンがフリーラジカルを生成

販のフード (ノバルティス・アニマルヘルス, 東京)

２＋

流入が

を１日２回給与した. 飲料水は水道水を自由摂取させ亢進して細胞死を引き起こすと推察されている [16, 17].

た. なお, 全ての動物の飼育・管理および使用は岩手

この仮説に対する反論として, Wainfordら [18, 19]

大学動物実験委員会認可とともにはマウスおよびラットにGGT阻害薬acivicinを腹腔内に関する指針してミトコンドリア膜を損傷した結果, Ca― 40 ―

に従って実施した.

岩手大学動物実験

検討
１

Switzerland) を用いて懸濁後, 遠心して (600g, 10ラットでのシスプラチン腎傷害に対するAOAAの分間) 上清を得た. 上清をさらに遠心 (6,000g, 20分

防御効果間) 後, 得られた沈殿物に約１の homogenize

６週齢の雄性ラット (n=５) にシスプラチンの45

bufferを加えテフロンホモジナイザーで撹拌し, これ

mg/m２を静脈内単回投与した (シスプラチン単独群).

をミトコンドリア分画とした. この分画を５−10分間

AOAAはシスプラチン投与60分と30分前の２回強制

ソニケーション (Bioruptor, コスモバイオ, 東京)

経口投与した (シスプラチン＋AOAA併用群). Saline

後, 遠心 (20,400g, 10分間) して, 得られた上清を対照群には生理食塩水 (15/kg, 静脈内) とMQ水マトリックス分画とした. 全ての操作は４℃下で行い,/kg, 経口) を投与した. 本実験ではシスプラ

得 ら れ た サ ン プ ル は BCA-200 Protein Assay Kit

チン投与日をDay１とし, ５日間観察 (Day５に屠殺)(BCA法, Pierce, USA) でタンパク濃度を測定後, −80℃した, 使用した薬物の用量, 投与液量および投与条件で保存した.

は予試験を基に設定した.

２−２

(10

Western blot解析

Day５にラットはエーテル麻酔下, 頸動脈より採血

各動物から得たミトコンドリアマトリックス分画のした. 得られた血清を用いて尿素窒素 (UN) およびタンパク量を, 20μgになるように調整し, 電気泳動

クレアチニン濃度をオートアナライザー (Accute

用ゲル (e-PAGEL , 12.5%濃度, アトー株式会社,

TBA-40FR, 東芝メディカルシステムズ, 栃木) で測

東京) を用いて, 泳動後 (SDS-PAGE, 25mA, 60分

定した. 屠殺後, 摘出した右腎は直ちに10%ホルマリ

間), 分離したタンパクを疎水性ポリフッ化ビニリデ

ンで固定後, ３μmに薄切し, 定法に従いヘマトキシ

ン (PVDF) 膜 (ImmobilonTM -P, Millipore, USA)リン・エオジン (H-E) 染色を施し鏡検した. 近位尿に転写 (120mA, 60分間) した. 転写した膜はブロッ

細管上皮細胞の壊死スコアーは, 変化なし (−), 軽キ ン グ バ ッ フ ァ ー ( Odyssey

微 (±), 軽度 (＋), 中等度 (2＋) および重度 (3＋)

System Blocking Buffer, Li-COR Biosciences, USA)とし, 鏡検はblind下で行い, その後peer reviewを受で４℃一晩振盪させた. その後, マウス抗ヒト抗体

けた.

GOT2 (HOOOO2806-A01, Abnova, 台湾) をCan

腎皮質Pt濃度は左腎皮質の0.1gを−30℃で凍結した

Get Signal

Infrared Imaging

Immunoreaction Enhancer Solution 1

後, 一昼夜かけて凍結乾燥し, 乾固物の重量を測定し(東洋紡, 大阪) を用いて500倍に希釈し１時間室温にた. 乾固物に濃硝酸１を添加し, 100℃のホットプて反応させた. 0.05%Tween20加トリス緩衝液 (Tris-

レート上で可溶化し, さらに乾固した. これに１M硝

buffered saline with 0.05% Tween20：TBS-T) で洗
Immunoreaction Enhancer

酸を加えて測定用サンプルとした. 腎皮質Pt濃度は小浄後, Can Get Signal型サイクロトロン (baby cyclotron) を用いたParticle

Solution ２ ( 東 洋 紡 ) を 用 い て 5000 倍 に 希 釈 し た

Induced X-ray Emission (PIXE：粒子線励起X線)

IRDye680 標 識 抗 マ ウ ス IgG 二 次 抗 体 ( Rockland

法により測定 (岩手医科大学仁科記念サイクロトロン

Immunochemicals, USA) を室温, 遮光下にて１時センター, 滝沢) した. PIXE法はサイクロトロンな間反応させた. TBS-Tにて洗浄後, 抗原抗体反応さどの加速器で試料に粒子線を照射し, 発生する元素固せたタンパクは Odyssey Infrared Imaging System

有のエネルギーを持つ特性X線を測定して元素を分析(Odysseyする方法である. 単位はμg/g乾燥重量で表した.

を用いて検出・可視化した. なお, mitAspATのアミノ

Infrared Imager, Li-COR Biosciences)

酸配列は動物種によって異なるが, 一部cross reaction２

各種健常動物での腎皮質C-S lyase活性があるため同一性の確認は可能と考え, 本抗体を用い健常マウス, ラット, ウサギ, ネコおよびイヌから腎皮質を摘出し, そのミトコンドリア分画を下記手順た.
２−３

ミトコンドリア分画におけるC-S lyase活性をアスに従って調整した.
２−１

腎皮質mitAspAT活性の測定

細胞分画

パラギン酸アミノトランスフェラーゼ (mitAspAT)

各 腎 皮 質 を 約 0.5g 秤 量 し , ４ 倍 量 の homogenize

活性とみなし, Cooper and Meister [20] の方法に0.25 Mスクロースと10mM Tris-HCl (pH 7.5)

準じて測定をした. すなわち, 0.1 M Tris-HCl (pH8.8),をMQ水で希釈して作製 と１/10量のprotease inhibitor

５mM α-keto-γ-methiolbutyrate (α-KGM, Sigma,

cocktail 液 ( Complete Mini , Roche Diagnostics ,USA) および 20mM L-phenilalanine (ナカライテス

Germany, １錠を1.5ク株式会社, 京都) から成る反応基質 (各５bufferのMQ水にて溶解) を加え,

オートホモジナイザー (Polytron , Kinematica AG,) にマ

トリクス分画をタンパク量として40μgを加えて総量― 41 ―

が50となるようにMQ水で調整し, 37℃で30分間

incubateした. 反応は１M KOHの150

物課程生化学研究室において, 樹立されたものを用い,を添加して培地は５% FBS-MEMを使用した. イヌ腎臓由来細胞停止させ, 生成されたphenyl-pyruvateを吸光度OD

MDCK (Madin-Darby canine kidney) は本学応用

332nmで測定した. 得られた吸光度はphenyl-pyruvate

生物課程生化学研究室が, 理化学研究所から分与されの分子吸光定数 (=16,000) から酵素活性を算出したものを用いた. 培地は10% FBS-MEMを使用した.

nmol/min･mg proteinで表した.

なお, マウス腎臓由来細胞に関しては, 樹立を試みたが, 良好な系を確立できなかったため, 本実験では上３各種動物での最小腎傷害誘発用量の推定

記４種培養細胞系のみで実験を行った. 各培養細胞は

投与量はマウスでは22.5, 45および90mg/m２の３用
２

37℃, CO２ 濃度５%の条件下で培養し, 継代は0.1%

量を, ラットでは11.3, 22.5, 45および90mg/m の４

Trypsinを用いて３−４日に１回行った. また, 各細用量を, ウサギではマウスおよびラットの結果を参考

胞を実験に用いる際は, 尿細管細胞はnon-dividing

２に, 45mg/m 近傍を含むように12, 24, 48, 96およcellsであるため, confluent状態になったものを用い

び192mg/m２ の５用量を設定した. 対照群には シス

た. 96-well plateに１wellあたり1.0×10４ 個の細胞をプラチンの最大投与量と同量の生理食塩水を投与した.

播種し (Day１), Day４にconfluent状態にさせてかなお, ネコおよびイヌの腎傷害誘発用量は既報から引ら実験に使用した.

用できることから, 投与実験は行わなかった.

４−２

リアルタイムPCR

Day５にマウスおよびラットはエーテル麻酔下で腹各細胞からRNAをAGPC (acid guanidium phenol大動脈あるいは頸動脈から, ウサギは耳静脈から採血

chloroform) 法を用いて抽出し, 逆転写反応を Oligo

し, 上記と同様な方法で血清UNおよびクレアチニン

dT法 (Rever Tra Ace-α-ＴＭ, 東洋紡績, 大阪) で行っ濃度を測定し, 近位尿細管上皮細胞の壊死のスコア化

た. リアルタイムPCRはSYBR Premix Ex TaqTM IIとともに腎皮質Pt濃度を定量した.

(Perfect Real Time, タカラバイオ, 東京) を用いた. 検出したC-Slyaseの分子種はGOT2 (mitAspAT)

４

In vitro 細胞系でのC-S lyaseの発現とシスプラ

チンの細胞傷害性４−１であり [21], normalizerとしてGAPDHを用いた [22].
なお, 本実験ではGOT2およびGAPDHのプライマー

培養細胞の調整はラット用に設計 (表１) されたものを用いた. 10倍

ラット腎臓由来細胞NRK (Normal rat kidney,

希釈した逆転写反応液にSYBR Premix Ex TaqTMII,RCB0043) およびウサギ腎臓由来細胞RK13 (Rabbit

10pmol/μL PCR Foward Primerおよび10pmol/μL

kidney13, RCB0183) は文部科学省ナショナルバイ

Reverse Primerを加え, 滅菌MQ水で全量を25μL

オリソースプロジェクトを介して理研BRC (東京)よにした. 反応液調整後, スピンダウンし, サーマルサ

り入手した. ラット用培地はイーグルMEM培地 ｢ニッイクラー (Thermal Cycler Dice Real Time System

スイ｣ (日水製薬, 東京) をMQ水に溶解し, オート

TP850, タカラバイオ) でrelative quantificationを行っ

クレーブにより高圧蒸気滅菌をした後, 7.5% NaHCO３,

た. その後, GAPDHに対するGOT2の相対発現量を３ % グ ル タ ミ ン 酸 溶 液 お よ び fetal bovine serum

求めた.

(FBS) の50４−３を添加した. これを10% FBS-minimum

essential medium (MEM) とした. ウサギ用培地はシスプラチンによる細胞毒性

Confluent状態の細胞の培地を除去し, 新たに１%

MEMにNEAA (MEM Non-Essential Amino Acids

FBS-MEM培地を100

100 x Solution) 10mM (GIBCO) を添加し, 0.1mM培地で希釈したシスプラチンをincubate後添加して,NEAA含有10%FBS-MEMとした. ネコ腎臓由来細胞

３時間曝露させた. シスプラチンの濃度は予試験を基

FKD (Feline kidney distal tubule cell) は本学応用生に各細胞がほぼ死滅する濃度を最高濃度に６段階に設

表１/well加えた.１% FBS-MEM

リアルタイムPCRに使用したプライマー

Gene

Accession No.

PrimerSequence

Position

GOT2

NM̲013177

Forward5'-TGCCAATCCTATGCCAAGAACA-3'

909-930

Reverse5'-CTTCTGCATCTTTGCAGACCACA-3'

965-984

Forward5'-GGCACAGTCAAGGCTGAGAATG-3'

242-263

Reverse5'-ATGGTGGTGAAGACGCCAGTA-3'

364-384

GAPDH

NM̲017008― 42 ―

定し, １濃度あたり６well用いた. すなわち, ラット

ると判定した.

では50-400μM, ウサギでは25-400μM, ネコとイヌ
成では3.13-100μMに設定した. 曝露終了後, シスプラ
チン添加１%FBS-MEM培地を除去し, １% FBS-MEM

１績

ラットにおけるシスプラチン腎傷害に対する培地を100 /well加え, 21時間incubateした. その後,AOAAの防御効果 (表２)

WST-1assay (Cell Counting Kit, 同仁化学研究所,

シスプラチン単独群ではsaline対照群に比べ, 血清熊本) で細胞計数を行い, コントロール群の生存率を

クレアチニン濃度 (3.03mg/

100%として各シスプラチン濃度における生存率 (%)

組織学的には近位尿細管上皮細胞の重度な壊死・脱落,を算出して50%阻害濃度 (IC50) を求めた.

刷子縁の消失, 核濃縮および管腔内のタンパク円柱を) の有意な上昇, 病理認め (図２A), １例の死亡がDay２に観察された.
統計解析

AOAAを前処置すると, 死亡例はなく, 血清クレア

得られたデータは平均値±標準偏差 (SD) で表し,

チニン濃度 (1.04 mg /) の有意な低下と上皮細胞２群間の比較ではF検定による分散分析を用い, そのの壊死の軽減が認められた (図２B). なお, AOAA

後Studentのt検定を実施した. ３群以上の場合は一元単独群では血液生化学的および病理組織学的に特記す

配置分散分析 (one-way ANOVA) を行い, 有意差べき所見は認められなかった. 腎皮質Pt濃度はシスが認められた場合, Dunnettの多重比較検定を行った.

プラチン単独群 (37.4±12.5μg/g) とAOAA併用群

危険率５%未満で差異が認められた場合に有意差があ(35.1±5.8μg/g) の間に有意差は認められなかった.

表２
投与群
Control

シスプラチンとAOAAを雄性ラットに併用投与後, Day５における臨床病理学的所見
用量

Saline10mL / kg＋DW10mL / kg

体 重b)
(mg/kg)193.2 ± 12.6＊

AOAA alone

Saline10mL / kg＋AOAA100mg / kg 174.4 ± 7.5

Cisplatin alone

Cisplatin45mg / m２ ＋DW10mL / kg

死亡率

腎近位尿細管上皮の 腎皮質Pt
血 清
壊死スコアーa)クレアチニン
濃度(mg/ )− ± ＋ 2＋ (μg/g)

0/5 0.20 ± 0.01b)

5c)

0

0

0

BLQ

0/5 0.21 ± 0.01

5

0

0

0

BLQ

0

0

0

4 74.9 ± 12.5

0/5 1.04 ± 0.20 † 0

1

4

0 70.2 ± 5.8

139.8 ± 13.0＊＊ 1/5 3.03 ± 1.06＊

２＊＊

Cisplatin+AOAA Cisplatin45mg / m ＋AOAA100mg / kg 142.8 ± 6.1＊＊

BLQ：below the limit of qualification, Saline：0.9% physiological saline, DW：distilled water
AOAA was orally administered 30 and 60 min before an intravenous injection of cisplatin.
a)Grade, −：no change; ±：slight; +：mild; 2＋：moderateb)Values show the mean ± SD.
c)
Number of animals showing lesions＊
P < 0.05, ＊＊ P < 0.01 vs. control (Dunnett's test), † P < 0.01 vs. cisplatin alone (Student's t-test)

図２ シスプラチンとアミノオキシ酢酸 (AOAA) を雄性ラットに併用投与後, Day５における腎組織像. A：シス
プラチン (45mg / m２, iv) 単独群, 広範な近位尿細管上皮の壊死と核濃縮を示す上皮 (矢印) が観察された.
B：シスプラチン (45mg / m２, iv)+AOAA (100mg / kgx2, po) 併用群, シスプラチン単独群の傷害が軽減されている. H-E staining, Bars=100μm― 43 ―

図３ 健常マウス, ラット, ウサギ, ネコおよびイヌの腎皮質ミトコンドリア分画アスパラギン酸アミノトラン
スフェラーゼ活性 (mitAspAT) とWestern blot解析. Ａ：mitAspAT活性, n=６, ＊ P <0.05vs.マウスmitAspAT(Dunnettの多重比較検定). Ｂ：Western blot, マウス抗ヒト抗体 GOT2を使用, C-S lyaseは同一分子量37.1kDに存在する.

２

各種健常動物における腎皮質C-S lyase活性２−１

ニン濃度の有意な上昇 (9.44mg/) がみられ, 192

２Western blot解析 (図３B)

mg/m 群では全例死亡した. なお, 溶媒対照群ではマウス, ラット, ウサギ, ネコおよびイヌの５種のnaive動物を用いて腎皮質におけるmitAspATタンパ

試験期間を通して異常症状は認められなかった.
３−２

腎病理組織学的所見

クの検出を抗体で行ったところ, 全ての動物で分子量検討した３種動物間においては腎の形態学的変化は37.1kDa付近にバンドが検出された. したがって, これら

共通しており, 近位尿細管上皮細胞の脱落・壊死, 刷の動物において腎皮質ミトコンドリアにC-S lyase活性

子縁の消失, 管腔内のタンパク円柱, 尿細管傷害に反を有する共通のタンパクが存在することが確認された.

応した再生性変化 (上皮細胞の巨核化) が特徴的であっ

２−２

た. マウスでは45mg/m２ 群以上から軽微から軽度の腎皮質mitAspAT活性 (図３A)

５種のnaive動物を用いて腎皮質mitAspAT活性を

近位尿細管の壊死 (スコア平均値：0.4) がみられた.

測定したところ, マウス (9.2nmol / min・mg,n=５),

ラットでは22.5mg/m２群以上で中等度の近位尿細管のおよびウサギ (8.0nmol / min・mg,n=６) に比べ, ラッ

壊死, タンパク円柱および再生性変化が観察された.

ト (29.5nmol / min・mg,n=５, P < 0.05) およびネコ

ウサギでは48mg/m２ 群で軽度から中等度の近位尿細(31.4nmol / min・mg,n=６, P < 0.05) で有意に高い管の壊死 (1.67) およびタンパク円柱が認められた.

活性を示した. イヌはこれら４種の中では中間値であっ上記３−１の血液生化学検査結果と考え併せると, 腎

た (18.8nmol / min・mg,n=６, P < 0.05vs.マウス).

傷害誘発用量は, ウサギ48mg/m２≒マウス45mg/m２＞ラット22.5mg/m２の順であり, ラットで腎傷害性が３

各種動物における最小腎傷害誘発用量 (表３)

３−１

最も強かった.

血液生化学検査３−３２

マウスでは45mg/m 群から血清クレアチニン (0.18２

腎皮質Pt濃度マウス, ラットおよびウサギとも腎皮質Pt濃度は用) の上昇傾向がみられ, 90mg/m 群では１例

量依存性に増加した. 上記３−２の腎傷害誘発用量でがDay2に状態が悪化し, 切迫屠殺した. ラットではの腎皮質Pt濃度は, マウス16.0μg/g, ラット26.8μg/g

22.5mg/m２群以上で血清クレアチニン濃度の有意な上およびウサギ81.7μg/gであり, 腎皮質Pt濃度は, ウmg/

昇 (0.56mg/

２) が認められ, 90mg/m 群では全例死サギ＞ラット＞マウスの順に高かった.

２

亡した. ウサギでは48mg/m 群以上で血清クレアチ― 44 ―

表３

シスプラチンを雄性マウス, ラットあるいはウサギに単回静脈内投与後, Day５における臨床病理学的所見

動物種

Mice

Rats

Rabbits

用 量(mg/m２)

体重b)

死亡率

血清
クレアチニン(mg/ )

Control
22.5
45
90
Control
11.3
22.5
45
90
Control
12
24
48
96
192

20.5 ± 0.8
19.7 ± 1.1
16.5 ± 1.3＊＊
16.9 ± 0.9＊＊
189.7 ± 7.6
180.0 ± 5.3
168.8 ± 9.9＊
144.4 ± 5.1＊＊
ND
2.70 ± 0.14
2.68 ± 0.23
2.69 ± 0.24
2.27 ± 0.18＊＊
2.00 ± 0.18＊＊
ND

0/5
0/5
0/5
2/5
0/5
0/5
0/5
0/5
5/5
0/3
0/3
0/3
0/3
0/3
2/2

0.07 ± 0.01c)
0.09 ± 0.07
0.18 ± 0.11
2.04 ± 0.72＊
0.23 ± 0.02
0.23 ± 0.01
0.56 ± 0.15＊
2.39 ± 0.32＊
ND
0.78 ± 0.03
0.82 ± 0.05
0.94 ± 0.06
9.46 ± 1.03＊＊
14.10 ± 1.95＊＊
ND

腎近位尿細管上皮の壊死スコアーａ)
−
±
＋
2＋ 3＋
5ｂ) 0
0
0
0
5
0
0
0
0
2
2
1
0
0
0
0
2
1
0
5
0
0
0
0
5
0
0
0
0
0
0
0
4ｅ) 0
0
0
1
4
0
0
0
0
1ｆ) 0
3
0
0
0
0
3
0
0
0
0
3
0
0
0
0
0
0
1
2
0
0
0
0
1
2

腎皮質Pt濃度(μg/g)
BLQ
10.5 ± 1.8
16.0 ± 5.1
31.0 ± 4.7
BLQ11.0 ± 4.8
26.8 ± 5.3
60.0 ± 8.5
128.9
BLQ
19.8ｇ)
31.1
81.7
176.2

BLQ：below the limit of qualification, ND：no dataａ)Grade, −：no change; ±：slight; ＋：mild; 2＋：moderate; 3＋：severeｂ)
The unit of body weight is g for mice and rats, and kg for rabbits.
ｃ)
Values show the mean ± SD.
ｄ)
Number of animals showing lesionsｅ)
One animal was excluded because of the technical error of the tissue preparation.
ｆ)
One moribund animal was included.
ｇ)
The number of animals was 2, because of accidentally technical errors. Values show the mean.
＊
P < 0.05, ＊＊ P < 0.01 vs. in each species (Dunnett's test)

図４ ラット, ウサギ, ネコおよびイヌの腎由来培養細胞におけるC-S lyase mRNAの発現と細胞傷害性. A：
リアルタイムPCRにおけるC-S lyase mRNAの相対発現. GAPDH mRNAで補正した (%). B：細胞傷害性のIC50
値 (５−６回の実験より求めた), ＊＊ P < 0.01vs.ラットIC50値 (Dunnettの多重比較).

４

In vitro 細胞系でのC-S lyaseの発現とシスプラチ

ンの細胞毒性４−１

順に高かった. また, ラットに対し, ウサギ, ネコおよびイヌにおいて有意差が認められた.

リアルタイム PCR (図４A)

４−２

シスプラチンによる細胞毒性 (図４B)

GAPDHをnormalizerとして相対定量を行ったmRNA

シスプラチンの３時間連続曝露のおけるIC50値はウレベルでの相対mitAspAT値はイヌ(1.0x10−１)＞ネコ

サギ(157.3μM)＞ラット(96.2μM)＞イヌ(15.5μM)(4.6x10−２)＞ラット(2.2x10−２)＞ウサギ(2.2x10

−４

) の

＞ネコ(9.90μM) の順に高かった. また, ラットに― 45 ―

対し, ウサギ, ネコおよびイヌにおいて有意差が見ら

次に, ５種類の健常動物を用いて, 腎皮質ミトコン

れた. したがって, 細胞毒性はネコ＞イヌ＞ラット＞

ドリア (マトリクス) 分画におけるbasal C-S lyase

ウサギの順に強かった.

の発現をWestern blotで調べたところ, 同一の分子量 (37.1kDa) においてタンパクが確認された (図３B).

考察

また, これら腎皮質C-S lyase活性を定量的に測定し哺乳類においてC-S lyase活性を有する酵素は, 細たところ, ネコ＞ラット＞イヌ＞マウス＞ウサギの順

胞質に６種, ミトコンドリアに４種, 両方に共通するに活性を示し, ネコはイヌより活性が高く, ウサギの1種の計11種類存在することが, これまでの研究で判活性が最も低かった (図３A). したがって, 腎皮質

明している [23]. これら11種の酵素は, 全てピリド

ミトコンドリアにおけるC-S lyase活性には動物種差

キサルリン酸 (pyridoxal 5'-phosphate: PLP) を補酵があることが判明した.

素とし, アミノ酸の生合成に関与するアミノ基転移を

上記成績を基に, 種差の存在を確認するために, 最触媒している. このため, 殆どがアミノトランスフェ

小腎傷害誘発用量を, 血清クレアチニン濃度と腎尿細ラーゼ (AST) であると考えられている. 本研究で管上皮の壊死を指標に調べたところ, ラットで22.5取り上げたミトコンドリア分画アスパラギン酸アミノ

mg/m２, マウス45mg/m２, ウサギ48mg/m２であった.

トランスフェラーゼ (mitAspAT) は, 細胞質由来

既文献によると, イヌでの腎傷害用量は40mg/m２ ,AspAT (cytAspAT) やアラニンアミノトランスフェ

ネコでは強い肺水腫を併発するものの40mg/m２ 以下

ラーゼ (cytAlaAT) よりも腎における化合物代謝にと推測されている [12]. これらデータを考え併せる深く係わり [24], シスプラチン腎傷害においては,と, ラットおよびネコは高感受性, マウスおよびウサ

活性代謝物チオール化シスプラチンを生成し, ミトコ

ギはそれより低く, イヌはその中間であると考えられンドリア障害を誘発すると考えられている [16, 17].

た. 一方, 腎傷害誘発用量での腎皮質Pt濃度はウサギ

なお, 血漿 (清) AspATは, 細胞質およびミトコン＞ラット＞マウスの順に高く, 上述の腎傷害誘発性

ドリア由来AST (GOT)を含有し, 定型的な肝臓検査(ラット＞マウス≒ウサギ) とは乖離が認められた.

として繁用されている.

そこで, 腎傷害誘発性, 腎皮質Pt濃度および腎C-S

まず, シスプラチン腎傷害にC-S lyaseが関与する

lyase活性の３つの因子を考慮に入れると, マウスでことを確認するために, ラットにシスプラチンを単回静は腎へのシスプラチン (すなわちPt) の移行が少なく,注したところ, 著しい血清クレアチニン濃度の上昇とかつ活性代謝物 (チオール化シスプラチン) 生成に関近位尿細管上皮細胞の重度の壊死が観察された (シス

与する腎C-S lyase活性も低いことから腎傷害が惹起

プラチン単独群). これにC-S lyase阻害薬AOAAを前され難かったと考えられた. ラットでは腎にシスプラ投与すると, 単独群で見られた腎傷害を機能・形態学

チンが移行し易く, かつ腎C-S lyase活性が高いこと的に明らかに軽減した (AOAA併用群). しかし, 腎から強い腎傷害が誘発されたと推測された. 一方, ウ

皮質Pt濃度にはシスプラチン単独群とAOAA併用群

サギでは腎に高濃度のシスプラチンが移行するものの,との間には有意差が認められなかった. マウスでの実験

腎C-S lyase活性が低いことから重篤な腎傷害発現ににおいても, AOAAを併用投与するとシスプラチン

繋がらなかったと考えられた.

腎障害を防御するものの, 腎皮質Pt濃度には差が認め前述したようにシスプラチン腎傷害における発現機られなかったとの報告 [15] があり, 本実験の結果と作に関しては, Haniganら [16, 17] とWainfordら

よく一致していた. これら結果を考え併せると, シスプラ

[18, 19] の間には考え方に大きな違いがある. 本研

チン腎傷害は未変化体 (親化合物) によって引き起こ

究での動物種差のデータを基にすると, Haniganらされるのではなく, C-S lyaseによるbiotransformation[16, 17] の仮説を一部支持するものであった. すなにより生成された活性代謝物 (チオール化シスプラチ

わち, 近位尿細管で再吸収されたcysteine-S-conjugateン) の関与が強く支持された. なお, C-S lyase阻害が上皮細胞内に存在するC-S lyaseによりC-S結合が切薬AOAAはPLPの特異的アンタゴニストとして働き,断され, 反応性に富んだ活性代謝物チオール化シスプ

PLP (ビタミンB６) は上述したようにAspATがアミラチンが生成されるという仮説である. しかし, 最終

ノ基転移反応の際に必要とする補酵素であり, 環境汚的な検証には, チオール化シスプラチンの定量化が必

染物質ハロゲン化アルケンによる腎毒性を in vivo お須であり, このことは今後の課題として残っている.

よび in vitro 系双方で抑制することも知られているがIn vitro 系において, シスプラチンの細胞毒性と細[25, 26], 中枢抑制作用を有することから医薬品とし胞C-S lyase活性との間に関連があるか調べるために,ては開発されていない.

４種の腎由来培養細胞を用いて検討した. 検討に先立― 46 ―

ち, mitAspATの塩基配列は各動物によって異なり,

RM 3rd, Khanna C, Colbern GT, Working

動物種間の正確な定量比較は難しいと考えられたため,

PK：STEALTH liposome-encapsulated cisplatin

比較的相同性のある位置で新たにプライマーを設計し(SPI-77) versus carboplatin as adjuvant therapy

た. 本プライマーを用いて, リアルタイムPCRで各培

for spontaneously arising osteosarcoma (OSA)

養細胞のbasal C-S lyaseの相対発現 (GAPDHを補正

in the dog: a randomized multicenter clinical

した相対定量) を比較したところ, ネコとイヌで発現量

trial. Cancer Chemother Pharmacol, 50, 131-が高く, 次いでラット, そしてウサギの順であった. 次に,

136 (2002)

シスプラチンの細胞毒性の評価に先立ち, Ptを用いて[４] Kitchell BE, Brown DM, Luck EE, Woods

glutathione S-transferaseおよびcysteine-S-conjugate

LL, Orenberg EK, Bloch DA: Intralesionalの作成を試みたが, 目的とする生成物は得られなかっimplant for treatment of primary oral

た. そこで, 予めFBSとPtを結合させ, ４種培養細胞

malignant melanoma in dogs. J Am Vet Med

に対する シスプラチンの細胞毒性をIC50 値で比較しAssoc, 204, 229-236 (1994)

たところ, ネコ=イヌ＞ラット＞ウサギの順に強い細[５] Barabas K, Milner R, Lurie D, Adin C：

胞毒性がみられ, 上記basal C-S lyase発現量の順位

Cisplatin：a review of toxicities and therapeuticに類似していた. このことから, in vitro 系においてapplications. Vet Com Oncol, 6, 1-18 (2008)もbasal C-S lyase活性とシスプラチン 細胞傷害性に[６] Page R, Matus RE, Leifer CE, Loar A: Cisplatin,は関連性がみられ, C-S lyaseの発現量が細胞毒性に

a new antineoplastic drug in veterinary

関与していることが一部示唆された.

medicine. J Am Vet Med Assoc, 186, 288-290

以上より, 抗腫瘍薬シスプラチンによる腎傷害には(1985)

種差が存在し, その発現には腎へのPtの移行性とともに[７] Chikuma M, Sato T, Komeda S：Current status

腎皮質C-S lyase活性が深く係わっていることがin vivo

and future perspectives of platinum antitumor

および in vitro 系で明らかとなった. 今後, これらのdrugs. Yakugaku Zasshi, 128, 307-316 (2008)

知見がシスプラチンの有害作用を軽減し, 安全性の高い[８] Jacobs C, Kalman SM, Tretton M, Weiner MW：

C-S lyase阻害薬の開発に繋がることを期待している.

Renal handling of cis-diamminedichlorop-latinum(II).
Cancer Treat Rep, 64, 1223-1226(1980)

なお, 本研究の一部はKatayama R , Nagata S, Iida

[９] Litterst CL, Gram TE, Dedrick RL, Leroy AF,

H, Yamagishi N, Yamashita T, Furuhama K：Possible

Guarino AM：Distribution and disposition ofrole of cysteine-S-conjugate β -lyase in species

platinum following intravenous administrationdifferences in cisplatin nephrotoxicity. Food Chem.

of

Toxicol. 49, 2053-2059 (2011) に掲載されていますの

119875) to dogs. Cancer Res, 36, 2340-2344

で, 興味のある方は参照して頂ければ幸甚です.

(1976)

cis-diamminedichloroplatinum ( II )( NSC

[10] Lana SE：Chemotherapy. In：Dobson, J. M. and謝辞Lascelles, D. X. [eds] Manual of Canine andFeline Oncology, 2nd ed. New LLL Publisher,

本研究にあたり, 多大なご支援・ご指導を賜りまし(2003)た岩手大学共同獣医学科生産獣医療学教室 佐藤繁教
授に深謝します. また, 研究にご協力頂いた小動物外[11] Choudhury D, Ahmed Z：Drug-associated renal

科学教室 片山泰章先生, 応用生物化学課程 山下哲郎

dysfunction and injury. Nat Clin Pract Nephrol,

先生および河合成重教授に心より感謝の意を表します.

2, 80-91 (2006)[12] Knapp DW, Richardson RC, DeNicola DB,

引用文献

Long GG, Blevins WE: Cisplatin toxicity incats. J Vet Intern Med, 1, 29-35 (1987)[１] Giaccone G：Clinical perspectives on platinum[13] Hanigan

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MH,

Devarajan

P：Cisplatin

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Ther, 1, 47-61 (2003)

cisplatin in solid tumors: an analysis of the[14] Ludwig T, Riethmuller C, Gekle M, Schwerdt

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G, Oberleithner H: Nephrotoxicity of platinum[３] Vail DM, Kurzman ID, Glawe PC, O'Brien
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complexes is related to basolateral organiccation transport. Kidney Int, 66, 196-202 (2004)[20] Cooper AJL, Meister A：Glutamine transaminase
K from rat kidney. Methods Enzymol, 113,[15] Townsend DM, Hanigan MH: Inhibition of γglutamyl transpeptidase or cysteine S-conjugate344-349 (1985)-lyase activity blocks the nephrotoxicity of[21] Cooper AJL, Bruschi SA, Anders MW：Toxic,

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Bubber P, Pinto JT, Gibson GE, Hanigan MH：[22] Huang Q, Dunn RT 2nd, Jayadev S, DiSorbo

Cisplatin-induced toxicity is associated with

O, Pack FD, Farr SB, Stoll RE, Blanchard

platinum deposition in mouse kidney mitochondria

KT ： Assessment

in vivo and with selective inactivation of thenephrotoxicityby microarray technology.

α-ketoglutarate dehydrogenase complexin LL
C-PK1 cells. Biochemistry, 45, 8959-8971

ofcisplatin-induced

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[24] Cooper AJL, Bruschi SA, Iriarte A, Martinez-

Letter to the editor. Metabolism of cisplatin

Carrionto a nephrotoxin. Toxicology, 257, 174-175

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is mediated by gamma glutamyltranspeptidase,

Mechanism of S-(1,2-dichlorovinyl)

not via a C-S lyase governed biotransformation

glutathione-induced nephrotoxicity. Biochem

pathway. Toxicology, 249, 184-193 (2008)

Pharmacol, 35, 283-288 (1986)[19] Wainford RD, Weaver RJ, Stewart KN, Brown[26] Finkelstein MB, Baggs RB, Anders MW：

P, Hawksworth GM: Letter to the editor.

Nephrotoxicity of the glutathione and cysteine

Metabolism of cisplatin to a nephrotoxin.

conjugates of 2-bromo-2-chloro-1,1-difluoroethene.

Toxicology, 257, 176-177 (2009)

J Pharmacol Exp Ther, 261, 1248-1252 (1992)

パスツレラ・マルトシダと関連したカラス呼吸器

生物学, 毒性学は, パスツレラ・マルトシダ感染が疾患の集団発生に関する調査

疾患の原因であることを示唆していた. 生存捕獲さStrugnell BW, Dagleish MP, Bayne CW, Brown M,

れ呼吸器症状を呈していた個体からパスツレラ・マ

Ainsworth HL, Nicholas RAJ, Wood A and Hodgson JC

ルトシダが分離され, 分子および血清型分析では,(英国獣医学研究所, 英国)

菌体抗原型は３, ４, ７を示し, 全ての分離株の莢Avian Pathol , 40, 329-336 (2011)

膜抗原型はF型であった. 免疫組織化学は検査の診断的精度を高め, 生存捕獲された全ての個体と死亡

カラスの疾病や大量死の可能性のある原因につい個体12羽中10羽の肺病変内にパスツレラ・マルトシて, 2007年８月から2008年３月の間にイングランド

ダが検出された. これらの所見は, イギリスにおけ

北部の野外養豚場付近で調査された. 生存捕獲される野生のカラスは, パスツレラ・マルトシダに関連

呼吸器症状を呈していた５羽, 生存捕獲され呼吸器した肺疾患に罹患できること, さらにパスツレラ・症状がみられない１羽, 死亡個体12羽で構成される

マルトシダの潜在的なベクターとして家禽に対して９羽のハシボソガラスと９羽のミヤマガラスが検索危険性があることを示唆している.

された. 臨床症状, 肉眼的, 病理組織学的検査, 微― 48 ―(岩手大学獣医病理学研究室)