岩獣会報 (Iwate Vet.), Vol. 36 (№ 2), 43−55 (2010).

総説

幼若ラットを用いた中期イニシエーション活性検索法に関する実験病理学的研究

浅岡由次１,２)

要

酒井洋樹３) 平田暁大４) 佐々木
柳井徳磨３) 岡田幸助５)

淳５)

御領政信５)

約in vivo 中期イニシエーション活性検索法は肝臓の前がん病変を指標として, 非肝発がん物
質を含めた遺伝毒性発がん物質の発がん性 (イニシエーション活性) を短期間に検出できる試験系である. 過去の報告から, 本試験系では被験物質投与期間に肝臓における高い肝細胞増殖
活性と十分な代謝酵素活性が必要であることが知られているため, 従来法では被験物質投与期間に肝細胞増殖活性の誘導を目的とした肝部分切除等の細胞増殖刺激が用いられている. しかしながら, 細胞増殖刺激には解決すべき種々の課題が残されているため, 本研究では成長に伴う高い肝細胞増殖活性を有すると推察された幼若ラットを用いて, 細胞増殖刺激を必要としな
い中期イニシエーション活性検索法の開発を試みた. その結果, 実験１では, 生後４週齢前後のラットの肝臓は高い肝細胞増殖活性および十分な肝代謝酵素 (Cytochrome P450) の発現を有していることが示され, 実験２では, 生後４週齢ラットを用いた in vivo 中期イニシエー
ション活性検索法は, 被験物質投与期間に細胞増殖刺激を必要とせずに既知の発がん性物質である１,２-dimethylhydrazineのイニシエーション活性を従来法に比べて簡単, 早期に, また用量依存的, 投与期間依存的に検出できることが示された. 本研究より, 細胞増殖刺激を必要としない生後４週齢ラットを用いた in vivo 中期イニシエーション活性検索法は細胞増殖刺激を用いた従来法よりも動物福祉の観点で優れており, さらに被験物質の反復投与時におけるイ
ニシエーション活性検出感度を大きく改善し, 幅広い化学物質の発がん性評価に有用と考えられた.
キーワード：イニシエーション, 肝細胞増殖活性, 前がん病変, ラット, 発がん性評価１)

岐阜大学大学院連合獣医学研究科病態獣医学連合講座

２)

３)

岐阜大学応用生物科学部応用生物科学学科獣医学過程獣医病理学分野

４)

岐阜大学生命科学総合研究支援センター実験動物分野

５)

岩大支会

岩手大学農学部獣医学科獣医病理学研究室― 43 ―

東レ株式会社医薬研究所安全性研究室

緒

言知の発がん性物質を用いてその有用性が確認さ医薬品をはじめとした化学物質の発がん性評れている [22].

価は, 従来, げっ歯類に被験物質を生涯投与しラットを用いたin vivo 中期イニシエーションて形成されたがん病変を病理組織学的に評価す

活性検索法は, 肝臓を用いて被験物質のイニシ

るがん原性試験によって行われている. がん原

エーション作用と人為的な既知のプロモーショ

性試験は約３年もの期間ならびに莫大な労力おン処置によって誘発された前がん病変を, そのよび資金を必要とするために多種の被験物質のバイオマーカーであるglutathione S-transferase

評価には適していない. 一方, 多くの既知の発placental form (GST-P) を用いて評価するこ

がん性物質が変異原性発がん物質であることかとにより, 遺伝毒性発がん性物質のイニシエー

ら, 化学物質の発がん性リスク評価として,ション作用を比較的早期に評価できる試験法でAmes試験をはじめとした細菌や哺乳類の細胞ある [24]. 発がん性物質が有するプロモーショ

を用いた in vitro 遺伝毒性試験および小核試験

ン作用は可逆的で臓器特異的であるのに対して,をはじめとした in vivo 遺伝毒性試験が行われイニシエーション作用は不可逆的で非臓器特異ている [1,14]. しかしながら, がん原性試験的であることから [19], 本検索法では肝発がと遺伝毒性試験の評価のエンドポイントが大きん物質だけでなく非肝発がん物質の発がん性

く異なるために両試験の結果が必ずしも一致し(イニシエーション活性)ないことが数多く報告されている. そのため,ことが大きな利点である.

を肝臓で評価できる

遺伝毒性試験のように短期間でありながら, が発がん過程において, 細胞増殖は遺伝毒性発ん原性試験のように in vivo でのがん病変形成

がん物質の作用によるDNAの変異および表現

をエンドポイントとする中期発がん性試験法の型の変異 (イニシエーション) だけでなく, イ開発が進められている.

ニシエートされた細胞の単一性増殖 (プロモー

がん がイニシエーション, プロモーション,

ション) にも大きく関係している [7,8]. また, 多そしてプログレッションの段階を経て形成されくの発がん性物質の代謝活性化にはcytochrome

るという多段階発がん説に基づいた in vivo 中P450 (CYP) のような薬物代謝酵素が大きく期発がん性試験は, げっ歯類に既知のイニシエー

関わっている [13]. in vivo 中期イニシエーショ

ション処置またはプロモーション処置を施すこン活性検索法においても, 被験物質のイニシエーとによってがん病変が形成されやすい状況を人ション作用を十分に検出するために, 被験物質

為的につくり, 被験物質における発がん性作用

投与期間に肝臓における高い肝細胞増殖活性とのうちのイニシエーション作用またはプロモー

十分な薬物代謝酵素活性が必要である. したがっション作用を早期に検出する試験法である [12,て, 従来の in vivo 中期イニシエーション活性

15,24,27,30]. プロモーション作用を検出する検索法では, 肝部分切除, 肝傷害化学物質投与,

ラットを用いた in vivo 中期プロモーション活

絶食などの細胞増殖刺激が被験物質投与期間に性検索法 (伊東モデル, 多臓器発がんモデル)

高い肝細胞増殖を誘導するために用いられていは, 既に多くの既知の発がん性物質を用いてそるが [2,9,23], 細胞増殖刺激による動物の精の有用性が確認されており, 化学物質の発がん

神的・身体的苦痛および個体差の増大, 細胞増性評価に広く用いられている [16,17]. 一方,

殖刺激と被験物質の影響の相乗効果による毒性

イニシエーション作用を検出する試験系として,発現などが本試験法の課題として残っている.

ラットを用いた in vivo 中期イニシエーション

これまでの in vivo 中期イニシエーション活性

活性検索法が開発され, こちらも既に26種の既検索法は細胞増殖刺激による肝細胞増殖活性の― 44 ―

誘導が約１日程度しか持続しないため, 被験物

自然出産させた. 出産後, 仔は生後21日まで母質のイニシエーション活性を単回投与または１獣とともに飼育し, 生後21日以降は離乳すると日以内の分割反復投与でしか評価できない課題

ともに個別飼育した. さらに日本チャールズリ

も有している [24].

バーより生後７および11週齢の雌雄のSDラッ以上より, 従来の細胞増殖刺激を用いた中期

トを購入し, １週間馴化させた後に実験に用いイニシエーション活性検索法はその有用性が確た. 固形飼料 (CE-７；日本クレア, 東京) お認されているものの, 細胞増殖刺激の労力およ

よび水は自由摂取させた.

び動物に対する負荷などの解決すべき課題があ

実験２：雄Fischer (F344/DuCrlCrlj) ラッることから, 細胞増殖刺激を用いない新たな中トを日本チャールズリバー (厚木) より購入し期イニシエーション活性検索法の開発が必要とた. げっ歯類繁殖用飼料 (CA-１, 日本クレア)考えられた. そこで, 本研究では成長過程のたおよび水は自由摂取させた. 生後４週, 4.5週

めに肝細胞増殖活性が高いと推察される幼若動および８週のラットの肝細胞増殖活性および肝物に着目し, 実験１では, 細胞増殖刺激を用い

CYP酵素活性を調べる実験では, 生後３週おない中期イニシエーション活性検索法で求めらよび７週の雄ラットを購入し, １または1.5週

れる高い肝細胞増殖活性および十分な肝薬物代間馴化させた後に実験に用いた. 生後４週齢ラッ謝酵素を有するラットの週齢を見出すために,

トを用いた in vivo 中期イニシエーション活性

化学物質の毒性試験で一般的に用いられる検索法の実験では, 生後３週を購入し, １週間

Sprague-Dawley{Crl：CD(SD)}(SD) ラット

馴化させた後に実験に用いた.

の生後４日, 16日, 30日, ８週, 12週の雌雄の肝飼育環境については12時間の明暗サイクル,

臓における, 肝細胞増殖活性ならびに代表的な

湿度60％, 温度22℃±２℃とし, 動物の取り扱

薬物代謝酵素であるCYPの肝臓における発現いについては, 岐阜大学動物実験取り扱い規則を調べた. 実験２では, 発がん性試験で一般的

および岐阜大学応用生物科学部動物実験指針をに用いられる雄Fischer (F344/DuCrlCrlj) ラッ

遵守した.

トを用いて, 先の実験結果から得られた中期イ
ニシエーション活性検索法に用いるために最適

２

動物実験プロトコール

な週齢の肝臓が高い肝細胞増殖活性と十分な肝実験１：生後４日, 16日, 30日, ８週, 12週

CYP酵素活性を有するかどうかを確認した後,の雌雄の肝臓を実験に用いた. 動物は体重を測

その最適な週齢を用いた細胞増殖刺激を必要と定した後, 生後４日齢は過剰量のpentobarbital

しない中期イニシエーション活性検索法の有用Ｒ大阪) 麻(ネンブタール○；大日本住友製薬,

性について, 既知の遺伝毒性大腸発がん物質で酔で, 生後４日齢以外はisoflurane (フォーレ

非 肝 発 が ん 物 質 で あ る 1,2-dimethylhydrazineＲlaboratories, Abbott park, IL,
ン○；Abbott(DMH) を被験物質として用いて評価した [29,USA) 麻酔下放血で安楽死させ, 肝臓を採取

31].

した. 肝臓のCYPの遺伝子発現量および酵素活性の測定試料は直ちに液体窒素にて急速冷凍
材料と方法

１

して−80℃で保存し, 肝細胞増殖活性の測定試

動物料については４℃の４％パラホルムアルデヒド

実験１：日本チャールズリバー (日野) より

で24時間固定し, 常法に従ってパラフィン切片

妊娠21日の妊娠Sprague-Dawley{Crl：CD(SD)}を作製した. 得られたパラフィン切片は(SD) ラットを購入し, １週間馴化させた後に

hematoxylin eosin (HE) 染色および免疫染色― 45 ―

に供した. 実験に用いた生後４日齢, 16日齢,

次に生後４週齢ラットを用いた in vivo 中期

30日齢, ８週齢および12週齢の雌雄の体重範囲

イニシエーション活性検索法の試験デザインを(g) は, それぞれ (雄：12.0−14.0, 雌：11.4−

図１に示す. 生後４週齢のラットを, １㎎/㎏/13.7), (雄：29.6−33.2, 雌：27.5−31.7), (雄：dayのDMH単回経口投与群, １㎎/㎏/dayの74.8−101.6, 雌：64.0−94.2), (雄：242.9−306.1,

DMHの４日反復経口投与群, ４㎎/㎏/dayの

雌：165.4−195.4) および (雄：384.5−430.2,

DMH単回経口投与群, ４㎎/㎏/dayのDMHの雌：222.4−260.4) であった.

４日間反復経口投与群, 16㎎/㎏/dayのDMH

実験２：生後４週, 4.5週および８週のラット

単回経口投与群, ４㎎/㎏/dayのDMHの８日の肝細胞増殖活性および肝CYP酵素活性を調間反復経口投与・非プロモーション処置群 (非べる実験では, ラットに生理食塩水に溶解させた

プロモーション処置群), 溶媒 (生理食塩水)

100㎎/㎏の５-Bromo-２′-deoxyuridine (BrdU)

経口投与群 (対照群) の６群に群わけした. なを単回腹腔内投与し, 対照群には生理食塩水をお, DMH初回投与時のラットの体重範囲は52.1−

５mL/㎏単回腹腔内投与した. 投与後１時間に73.3gであった. 非プロモーション処置群を除Ｒ
laboratories)
isoflurane (フォーレン○；Abbott

いたすべてのラットはDMH初回投与時から１麻酔下で放血殺して肝臓を採取した. 肝臓は切

週間基本餌 (CA-１) で飼育した後, 0.015％のり出しした後, CYPの酵素活性測定試料は直ち

２ -acetylaminofluorene ( ２ -AAF ) を 混 じ たに液体窒素にて急速冷凍して−80℃で保存し,CA-１で２週間飼育し, その後再度基本餌で１肝細胞増殖活性測定用試料は10％formaldehyde

週間飼育した. さらにDMH初回投与時から２で24時間固定して常法に従ってパラフィン切片

週間後に, 非プロモーション処置群を除いたすを作製した. 得られたパラフィン切片はHE染

べてのラットにcorn oilで希釈した0.8ml/㎏の色およびBrdU免疫染色に供した. 生後４週,

carbon tetrachloride (CCl４ ) を単回経口投与

4.5週および８週の雄ラットの体重範囲 (g) はした. DMH初回投与時から４週間後に (生後それぞれ (61.0−67.1), (51.4−80.2) および８週), diethyl ether麻酔下で放血殺し, 肝臓(168.7−181.8) であった.

を 採 材 し た . 肝 臓 は 切 り 出 し し た 後 , 10 ％図１

生後４週齢の雄Fischerラットを用いた in vivo 中期イニシエーション活性検索法の動物実験プロトコールの試験デザイン. 詳細は材料と方法を参照.
２-AAF：２-acetylaminofluorene, DMH：１,２-dimethylhydrazine.
― 46 ―

formaldehydeで24時間固定して常法に従って

６

肝ミクロソーム画分におけるCYPの酵素

パラフィン切片を作製した. 得られたパラフィ

活性測定

ン切片はHE染色およびGST-P免疫染色に供し過去に報告された論文 [3-6,18,25,32] の方

た.

法を参考にして, 肝ミクロソーム試料のEthoxyresorufin O -deethylase (CYP1A) 活性,３

定量的リアルタイムPolymerase Chain

testosterone ７α-hydroxylase (CYP2A) 活性,

ReactionによるmRNA発現量解析

testosterone 16β-hydroxylase (CYP2B) 活性,

常法に従って, 肝臓からRNAを抽出後にtestosterone ２α-hydroxylase (CYP2C) 活性,

cDNAを合成し, 12種のCYP分子種 (CYP1A2,

testosterone ６β-hydroxylase (CYP3A) 活性,

CYP2A1 , CYP2A2 , CYP2B1 , CYP2B2 ,Chlorzoxazone hydroxylase (CYP2E) 活性を

CYP2C6 , CYP2C11 , CYP3A1 , CYP3A2 ,microplate reader ま た は high-performance

CYP3A9, CYP3A18, CYP3A23) のmRNA発

liquid chromatography (HPLC) を用いて測現 量 の 測 定 を Platinum SYBR Green qPCR

定した.

SuperMix UDG kit ( Invitrogen ) を 用 い て
ABI PRISM 7000 Sequence Detection System７

免疫組織化学的検査(Applied Biosystems) にて実施した [4]. プ

実験１では, 肝細胞増殖活性を調べるために,ライマーはNational Center for Biotechnology

常法に従って細胞分裂期のバイオマーカーであInformation GenBank (www.ncbi.nih.gov) かるphospho-histone H３ (p-histon) をrabbit

ら得た目的遺伝子の塩基配列情報を基にして,polyclonal anti-p-histon 抗 体 ( Ser 10, Cell

Primer Express software (Applied Biosystems,

Signaling Technology, Danvers, MA, USA) を

Foster City, CA, USA) にて設計した.

用いて免疫染色し, IPAP-WIN image processor
for analytical pathology (Sumika Technoservice

４

肝ミクロソーム画分の抽出

Corp., 宝塚) を用いて1,000個以上の肝細胞か

Pearceらの方法 [4,21] を参考にして, 肝臓からミクロソーム画分を抽出後, ミクロソー

らp-histon標識肝細胞率を画像解析により算出
した [4].

ム試料を−80℃で保存した. ミクロソーム試料

実験２では, 肝細胞増殖活性および肝臓内にの蛋白量は, Bio-Rad Protein Assay kit (Bio-

誘発された前がん病変の数および面積を調べる

Rad Laboratories, Hercules, CA, USA) を用ために, 過去に報告された論文 [2] 方法を参いてBradford法により測定した.

考にして, 細胞分裂期のバイオマーカーである
BrdUおよび前がん病変のバイオマーカーである

５

肝ミクロソーム画分における総CYP蛋白

GST-Pをそれぞれmouse monoclonal antibody

量の測定

against BrdU抗体 (DAKO Cytomation Inc.)

Omura and Satoの方法 [20,4] を参考にし

およびrabbit polyclonal antibody against ratて, ミクロソーム試料を亜ジチオン酸塩による

GST-P抗体 (MBL, 名古屋) を用いて免疫染色

還元条件下で一酸化炭素ガスに反応させ, 450

した. BrdU標識肝細胞率は, IPAP-WIN image

nmおよび490nmの吸光度を測定し, その吸光

processor for analytical pathologyを用いて,度差から測定試料中のCYP蛋白量を算出した.

BrdU免疫染色標本の2,000個以上の肝細胞から画像解析により算出し, GST-P陽性細胞巣の数
および面積は, デジタルスライドスキャナー― 47 ―

図２

肝重量およびp-histon標識肝細胞率 (Ｍ期細胞) の成長に伴う変化. グラフは
各群６-20匹の平均値および標準偏差を示す. ＊ P<0.01, significantly different
as compared with values for same sex rats aged ８ weeks. PD：postnatalday, W：week.

NanoZoomer Digital Pathology (浜松ホトニク

Aspin-Welchの検定) を実施した. なお, いず

ス, 浜松) および画像解析ソフトeCongnition

れの検定も有意水準は１％未満とした. 実験２

Developer version ７ (Definiens Inc., Munich,

では, 肝重量 (実重量および体重比重量),

Germany) を用いて, 直径0.1㎜以上のGST-P

BrdU標識肝細胞率について, Ｆ検定後に２群陽性肝細胞巣を検出して算出した [3].

間の検定 (Student s- t 検定またはAspin-Welchの検定) を実施し, GST-P陽性巣の単位肝臓面

８

統計処理

積あたりの数及び面積についてはBartlett等分

体重比重量, p-histon標識肝細胞率, mRNA

散検定後に多群の検定 (Dunnettの多重検定ま発現量および酵素活性, BrdU標識肝細胞率,

たはSteelの多重検定) を実施した. なお, い

GST-P陽性巣の単位肝臓面積あたりの数及び面ずれの検定も有意水準は５％未満とした.

積のデータにおいて, 平均値および標準偏差を結

算 出 し た . SAS シ ス テ ム 前 臨 床 パ ッ ケ ー ジ
Version 5.0 (SASインスティチュ−トジャパ

１

果

生後４日, 16日, 30日, ８週, 12週の雌雄ン, 東京) を用いて, 実験１では, 生後８週まSDラットの肝細胞増殖活性および肝臓におたは12週の同性に対する各日齢および週齢の差

けるCYPの発現の解析 (実験１)について, Bartlett等分散検定で等分散の場合

肝重量および肝細胞増殖活性の成長に伴う変はDunnettの多重検定を実施し, 不等分散の場

化：体重および肝実重量は生後４日から12週に合はＦ検定後に２群間の検定 (Student s- t 検

かけて, 成長とともに増加したが, 体重比肝重定またはAspin-Welchの検定) を実施した. ま

量は生後４日および16日で生後８週以降とほぼた, 各日齢および週齢の性差についても, Ｆ検同じで, 生後30日で生後８週以降と比較して約定後に２群間の検定 (Student s- t 検定または1.5倍を示した (図２). p-histon標識肝細胞率― 48 ―

図３

肝臓における各CYP分子種のmRNA発現量の成長に伴う変化. CYP2A1, CYP2A2,
CYP2B1, CYP2B2, CYP2C6, CYP2C11, CYP3A1, CYP3A2, CYP3A9, CYP3A18,
CYP3A23, CYP1A2のmRNA発現量をそれぞれA, B, C, D, E, F, G, H, I, J,
K, Lに示す. グラフは各群６匹の平均値および標準偏差を示す.
＊
Ｐ<0.01, significantly different as compared with values for same sex rats aged
12 weeks. ＃Ｐ<0.01, significantly different between values for male and female rats.
W: week.

は生後８週と比較して生後４日および16日は約増加し, 生後16日または30日で生後12週齢とほ３-４倍, 生後30日は約10倍高い値を示した.

ぼ 同 程 度 を 示 し た . 雌 雄 の CYP2B2 お よ び

生後４日から８週にかけて, p-histon標識肝細

CYP3A1ならびに雌のCYP3A2のmRNA発現量

胞率に明らかな性差は認められなかった.

は生後４日から30日にかけて生後12週齢と比較

肝臓におけるCYP分子種のmRNA発現量の成して著しく高い値を示した. これらのうち, 雌長に伴う変化：肝臓における各CYP分子種の雄のCYP2B2および雌のCYP3A2のmRNA発現

mRNA発現量を図３に示す. 肝臓における雌量は生後30日まで高い値を維持した. また, 雌

雄のCYP2B1, 雄のCYP2A1およびCYP3A2な雄のCYP3A1のmRNA発現量は生後30日以降

らびに雌のCYP3A23のmRNAは, 生後４日でに加齢とともに減少し, 雌のCYP3A2のmRNA

生後12週齢とほぼ同程度発現しており, その後は生後８週以降では検出されなかった. また,も 発 現 量 が 維 持 さ れ た . 雌 雄 の CYP1A2 ,雄のCYP2A2およびCYP2C11のmRNA発現量

CYP2C6およびCYP3A9, 雄のCYP3A18およは生後４日から30日にかけて低く, 生後８週でびCYP3A23ならびに雌のCYP2A1のmRNA発著しく増加した. それに対して, 雌のCYP2A2,

現量は, 生後４日で低く, その後成長に伴ってCYP2C11およびCYP3A18のmRNA発現量は,― 49 ―

図４

図５

肝臓における総CYP蛋白量および各CYPサブファミリーの酵素活性の成長に伴う変化. 総CYP蛋白量, ethoxyresorufin O -deethylase活性 (CYP1A), testosterone
７α-hydroxylase 活性 (CYP2A), testosterone 16β-hydroxylase活性 (CYP2B),
testosterone ２α-hydroxylase活性 (CYP2C), testosterone ６β-hydroxylase活性(CYP3A) をそれぞれＡ, Ｂ, Ｃ, Ｄ, Ｅ, Ｆに示す. グラフは各群４-８サンプル (生後４日および16日は２-３匹分を合わせて１サンプル) の平均値および標準偏差を示す.
＊
Ｐ<0.01, significantly different as compared with values for same sex rats aged
12 weeks. ＃Ｐ<0.01, significantly different between values for male and female rats.
PD：postnatal day, W：week.

生後４, 4.5, ８週齢の雄Fischerラットの肝重量. グラフは各群４-５匹の平均値および標準偏差を示す.
††
Ｐ<0.01, significantly different ascompared with values for ８-week-old
rats.

図６

生後４, 4.5, ８週齢の雄FischerラットのBrdU標識肝細胞率. 中央線およびその上下線は各群の平均値および標準偏差を示す.
††
Ｐ<0.01, significantly different ascompared with ８-week-old rats.

生後４日で低いが生後30日までは緩やかに増加のmRNA発現量を除いて, これらのCYP分子

し, その後生後８週および12週で生後４日と同種のmRNA発現量に明らかな性差は認められ等またはそれ以下に減少した. 生後８週およびなかった.

12週ではCYP2A1 (雄＜雌), CYP2C11 (雄＞

肝臓における総CYP蛋白量の成長に伴う変雌), CYP3A1 (雄＞雌), CYP3A2 (雄＞雌),化：肝臓における総CYP蛋白量は, 雌雄とも

CYP3A18 (雄＞雌), CYP3A23 (雄＞雌) のに生後４日で著しく少なく, 加齢とともに増加

mRNA発現量に明らかな性差が認められたが,し, 生後30日では雌雄ともに生後８週の雌と同生後４日, 16日および30日では, 生後30日の程度を示した(図４). 生後８週以降では総CYPCYP2A1 (雄＜雌) およびCYP3A23 (雄＞雌)

蛋白量に明らかな性差 (雄＞雌) が認められた.

― 50 ―

図７

生後４, 4.5, ８週齢の雄Fischerラットの肝臓における総CYP蛋白量およびCYP酵素
活性. 総CYP蛋白量, Chlorzoxazone hydroxylase活性 (CYP2E), ethoxyresorufin
O -deethylase活性 (CYP1A), testosterone ６β-hydroxylase活性 (CYP3A),
testosterone ７α-hydroxylase 活性 (CYP2A), testosterone 16β-hydroxylase活性(CYP2B) をそれぞれＡ, Ｂ, Ｃ, Ｄ, Ｅ, Ｆに示す. 中央線およびその上下線は各群の平均値および標準偏差を示す.
††
Ｐ<0.01, significantly different as compared with ８-week-old rats.

図８ 生後４週齢の雄Fischerラットを用いた
in vivo 中期イニシエーション活性検索法におけるGST-P陽性細胞巣の数および面積. グラフは各群８-17匹の平均
値および標準偏差を示す (非プロモーション群は３匹). †Ｐ<0.05, ††Ｐ<0.01,
statistically significant difference ascompared with animals receiving saline.
§
Ｐ<0.05, significant difference between
１-㎎/㎏/day and ４-㎎/㎏/day in ４-day
DMH administration groups. ２-AAF：
２-acetylaminofluorene, DMH ： １ , ２dimethylhydrazine.

図９

ラットの肝臓における各CYP分子種のmRNA発現量および各CYPサブファ
ミリーの酵素活性の成長に伴う変化のまとめ.
PD：postnatal day, W：week,
M：male. F: female.

週以降まで維持された. CYP2Cの酵素活性は
雌雄ともに生後４日から30日まで著しく低く,
生後８週で雄が著しく上昇し, 雌が低値で維持された. CYP1Aの酵素活性は雌雄ともに生後肝臓におけるCYPの酵素活性の成長に伴う４日で低く, 加齢とともに上昇し, 生後30日で変化：肝臓におけるCYPの酵素活性を図４に生後12週齢とほぼ同程度を示した. 雄のCYP2B

示す. CYP2Aの酵素活性は雌雄ともに生後４およびCYP3Aの酵素活性はCYP1Aの酵素活性日で生後８週と同程度に高く, その値は生後８と同様な成長に伴う変化を示した. それに対し― 51 ―

て, 雌のCYP2BおよびCYP3Aの酵素活性は,day の DMH を ４ 日 間 反 復 経 口 投 与 し た 群 の

生後４日から30日まで加齢とともに上昇したが,GST-P陽性巣の数および面積は, それぞれ４㎎/

生後８および12週で生後４日と同等またはそれ㎏/dayのDMHを単回経口投与した群および16以下の低値を示した. 生後８週および12週では㎎/㎏/dayのDMHを単回経口投与した群と同

CYP2B (雄＞雌), CYP2C (雄＞雌), CYP3A

程度の値を示した. 一方, CCl４および２-AAF(雄＞雌) の酵素活性に明らかな性差が認めらを処置しない非プロモーション処置群のGST-P

れたが, 生後４日, 16日および30日では, 生後

陽性巣の数および面積は対照群よりも著しく低30日のCYP2Aの酵素活性 (雄＜雌)を除き, こ

い値を示した.

れらのCYPの酵素活性に性差は認められなかっ
考

た.

察

CYP2E1によって代謝活性化されるDMHに
２細胞増殖刺激を必要としない幼若Fischer

代表されるように, 多くの発がん物質はCYPを

ラットを用いた in vivo 中期イニシエーショ

はじめとした薬物代謝酵素によって代謝活性化

ン活性検索法の有用性の検討 (実験２)

されなければその発がん性を示さない [10,26,

生後４週, 4.5週, ８週のFischerラットの肝28]. 代謝活性化した発がん物質が細胞内の蛋

臓における肝細胞増殖活性およびCYPの酵素

白やDNAに作用することで遺伝毒性や発がん

活性：肝臓の実重量および体重比重量を図５に性を示すが, その作用は細胞が増殖していると示す. 生後４週および4.5週の肝臓の実重量はきに最も影響を受ける [7,8,13]. これらのよ

生後８週齢と比べて著しく低い値を示したが,り, 細胞増殖刺激の代わりに幼若ラットを用い

体重比重量は生後８週齢と比べて著しく高い値

る中期イニシエーション活性検索法では, 被験を示し, 生後４週および4.5週のBrdU標識肝細

物質のイニシエーション活性の検出感度を高め

胞率は, 生後８週齢に比べてそれぞれ約３倍おるために, 被験物質の投与期間に高い肝細胞増よび２倍の高い値を示した (図６). 生後４週

殖活性と代謝活性化を起こす十分な肝代謝酵素

および4.5週の肝臓における総CYP蛋白量ならを有する週齢のラットを用いる必要がある.

びにCYP1A, CYP2B, CYP2EおよびCYP3Aの実験１で得られたSDラットの肝臓における酵素活性は生後８週齢とほぼ同程度を示し, 生

各CYP分子種のmRNA発現量およびCYPの各

後４週および4.5週のCYP2Aの酵素活性は生後酵素活性の成長に伴う変化のまとめを図９に示

８週齢よりも約２倍の高い値を示した (図７).

す. 生後30日の肝臓では, CYP2C11のような性生後４週齢Fischerラットを用いた in vivo 中特異的発現分子種を除いたCYPが生後８週以期イニシエーション活性検索法によるDMHの降とほぼ同程度発現しており, 生後４週前後のイニシエーション活性の評価：生後４週齢ラッ

幼若ラットの肝臓は成獣とほぼ同様な薬物代謝トを用いた in vivo 中期イニシエーション活性能を有していると考えられた. 一方, p-histon

検索法における各群のGST-P陽性巣の数および標識肝細胞率は雌雄ともに生後４日から30日で面積を図８に示す. DMH投与群において, 誘

生後８週と比較して高く, 特に生後30日で最大導されたGST-P陽性巣の数および面積は対照群となることが示された. さらに, Furukawaらと比較して著しく高い値を示し, DMHの投与量[11] がWistar Hannover GALASラットを用とGST-P陽性巣の数および面積の増加に用量依

いて生後４週から16週までの各週の肝細胞増殖存性が認められた. さらに, １㎎/㎏/dayのDMH

活性を調べた結果, 生後４週の肝細胞増殖活性を４日間反復経口投与した群および４㎎/㎏/が最も高いことを報告していることから, ラッ― 52 ―

トの肝細胞増殖活性は生後４週前後が最も高い

間が被験物質投与から５週間以上必要であったと考えられた. 以上の実験１の結果より, 幼若が, 本検索法は細胞増殖刺激を用いないためにラットを用いた in vivo 中期イニシエーション

初回被験物質投与後から４週間で十分評価が可

活性検索法において, 被験物質の投与期間に高能であると考えられた.

い肝細胞増殖活性と代謝活性化を起こす十分な本研究より, 幼若ラットを用いた in vivo 中肝代謝酵素を有する適切な週齢は生後４週前後

期イニシエーション活性検索法において, 被験と考えられた.

物質の投与期間に必要な高い肝細胞増殖活性と実験２の結果から, 生後４週および4.5週の被験物質の代謝活性化を起こす十分な肝代謝酵

Fischerラットは生後８週齢よりも約２-３倍の素を有する至適な週齢は生後４週前後であるこ

高い肝細胞増殖活性を有し, DMHの代謝活性とが示され, 生後４週齢雄Fischerラットを用化に必要なCYP2E1をはじめとしたCYPの各酵

いた in vivo 中期イニシエーション活性検索法

素活性も生後８週齢と同程度以上であることがは, 被験物質投与期間に細胞増殖刺激を必要と示された. さらに, 細胞増殖刺激を用いない生

せずにDMHのイニシエーション活性を簡単,

後４週齢Fischerラットを用いた in vivo 中期イ

早期に, また用量依存的, 投与期間依存的に検ニシエーション活性検索法において, DMH投出できることが示された. これより, 生後４週

与群でGST-P陽性巣が対照群と比較して著しく齢ラットを用いた in vivo 中期イニシエーショ増加した. したがって, 生後４週齢ラットは生ン活性検索法は, 従来法の課題である被験物質

後８週齢に比べて著しく高い肝細胞増殖活性と投与期間における細胞増殖刺激に必要な労力お同程度の肝臓における薬物代謝酵素を有し, そ

よび細胞増殖刺激が及ぼす動物への負荷を小さの生後４週齢ラットを用いた被験物質投与期間

くするだけでなく, 被験物質の反復投与によるに細胞増殖刺激を必要としない in vivo 中期イ

評価が可能となり, 幅広い化学物質の発がん性

ニシエーション活性検索法は, 従来の細胞増殖(イニシエーション活性) の評価に有用と考え刺激を用いた方法と同様に代謝活性化を必要とられた. 近年, 実験動物の取り扱いに対する配した被験物質のイニシエーション活性を検出で慮が強く求められるようになってきていること

きることが示された. また, 生後４週齢ラットからも, 本モデルが普及していくことが望まれにDMHの総投与量を４日間に分割反復投与しる.

た群が, DMHの総投与量を単回投与した群と謝同様なGST-P陽性巣の数および面積を示したこ

辞とから, 生後４週齢ラットを用いた中期イニシ

本研究を進めるにあたり, 御助言と御協力をエーション活性検索法は, 細胞増殖刺激が必要

頂きました岐阜大学の柵木利昭名誉教授, ファ

ないだけでなく, 従来の細胞増殖刺激を用いた

イザー株式会社の堀井郁夫博士および板村理央

方法では評価できなかった被験物質の反復投与

氏, 東レ株式会社の宮本庸平博士, 日本たばこによる評価も可能であると考えられた.

産業株式会社の崎村雅憲博士, 大正製薬株式会

生後４週齢ラットを用いる他の利点として,社の佐藤靖博士, 千葉科学大学の堀本政夫准教

従来の方法は通常, 生後４週齢の約３倍の体重授ならびに岐阜大学応用生物科学部獣医学課程を有する生後７週前後の週齢のラットを用いる

獣医病理学分野の皆様に感謝致します.

ため, 生後４週齢ラットを用いる本モデルは従来の方法に比べて約１/３の被験物質量で評価

引用文献が可能である. また, 従来の方法は動物実験期[１] Ames B, Gold L：Biotherapy 11, 205-

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アジアにおける高病原性鳥インフルエンザウ

いは死亡例であったことから, 渡り鳥が遠方

イルス (Ｈ５Ｎ１亜型) の起源と進化

からウイルスを運ぶ可能性は限定的であるとSims LD, Domenech J, Benigno C, Kahn

思われる. 野鳥がウイルスを伝播し, その変

S, Kamata A, Lubroth J, Martin V and

異を促した状況証拠があるが, 生鳥市場を介

Roeder P (FAO Animal Health Service,

した家禽の取引やウイルスを保有する水禽類

Rome, Italy) Vet Rec, 157, 159-164 (2005)の移動以上に, ウイルス伝播に意義深く関与したという理由はみあたらない. ウイルスは

Ｈ５Ｎ１亜型ウイルスによる高病原性鳥イ

1996年に中国南部のガチョウから初めて分離

ンフルエンザの発生が, 2003年12月から翌月され, 2000年までに宿主域がアヒルに拡大し,までのほぼ同時期にアジアの近隣８か国から,2004年前期までには同鳥からのウイルス排泄2004年８月に他の１国から報告され, ウイルが顕著となった. このアヒルが前述の広範なスが近年, 急速に拡散したことが示唆された.

流行に重要な役割を演じた. この流行は分子

ウイルスは数年前から同地域の家畜化された

学的に前述のガチョウ由来株から派生した複水禽類や水禽類から分離されていたが, これ数のウイルス株により引き起こされた. 前述

までに1997年の香港での発生を除いて, 他のの９か国中３か国は本病を清浄化したが, 他

地域や国での流行は報告されなかった. 可能国における清浄化への道のりは家禽の生産やな理由として, 水禽類からのウイルス排泄が取引地域にウイルスを保有する鳥が混在する

顕著ではなかったこと, 他の伝染病との誤診,ことから極めて厳しい. 産業振興および人へワクチンの未承認使用, 不正確な発生状況のの感染防止の観点から, 世界各国が協調して把握等が考えられる. ウイルスを分離した渡本流行を阻止する必要がある.

り鳥が, 一般に潜伏感染例ではなく罹患ある― 55 ―(岩手県中央家畜保健衛生所病性鑑定課)