岩獣会報 (Iwate Vet.), Vol. 39 (№ 2), 51−56 (2013).

総説

無線伝送式pHセンサーを用いた乳牛の亜急性第一胃アシドーシスの診断と制御に関する研究

木村要淳

約

近年, 生産性の向上を目指した濃厚飼料の多給や飼養管理の失宜によって, 亜急性 (潜在性) 第一胃アシドー
シス (SARA) の発生が問題となっている. SARAは, 第一胃液pHが１日に３時間以上にわたっておおよそ5.
6以下を呈する状態と定義されている. 佐藤らは, 臨床現場でのSARAの摘発を目的として, 経口的に投与可能な無線伝送式pHセンサーを新たに開発した. しかしこのシステムは現在のところ, 基礎的なデータの蓄積が少なく, 臨床領域でのSARAの診断と制御を目的とした本システムの普及については多くの課題がある. そのためSARAの診断と制御に, 無線伝送式pHセンサーを応用するための基礎的検討を行った.
キーワード：亜急性第一胃アシドーシス, 無線伝送式pHセンサー
近年, 急性アシドーシスとは病態が異なる亜急性第測定値が異なっており, 第一胃穿刺では, 採取による一胃アシドーシス (subacute rumen acidosis; SARA)

頻回穿刺に起因した腹膜炎や膿瘍誘発のリスクが伴うが問題となっている. アメリカでは, 泌乳初期牛〜中など, 第一胃液pHの測定には技術的問題が存在する

期で19％〜26%程度の発生があると報告されている[1]. そのため, 第一胃液pHの測定は極めて重要であ[1, 2]. SARAの定義は第一胃液pHがおおよそ5.6以ると認識されながら, 臨床的に実施されないことが多下となる時間が少なくとも３時間/日以上継続する状かった.

態である [3]. 乳牛の飼養管理は, 乾乳期から泌乳初

牛の第一胃内恒常性は, 発酵酸の生成と中和および期にかけて, 低エネルギー・高繊維飼料から高エネル吸収の均衡により維持されている. 第一胃液pHは,ギー・低繊維飼料へと変更される. これに伴い, 第一この均衡の変動に鋭敏に反応するため, その測定は,胃内で発酵酸の生成が増加するが, 乳酸利用菌が十分第一胃環境のモニタリングにおいて極めて重要である.に増殖していない場合や第一胃乳頭の増殖が十分でな

このことから, 第一胃フィステルを介した有線型の第い場合にSARAが誘発される [4]. SARAの発生には一胃留置型pH測定システムが開発され第一胃液pHの濃厚飼料の多給や飼料給与の失宜など栄養管理上の問

連続測定によって, SARAの病態に関する研究が行わ題が存在するため, SARA罹患牛群においては蹄葉炎,れてきた [1, 9−11].

食欲減退, 低乳脂肪症候群, 第四胃変位や潰瘍, 第一Satoら [12, 13] は, 第一胃液pH測定の臨床的応用胃炎などが発生する [5, 6]. このため, SARAは牛を目指し, 外科的処置が不要で, 経口的に投与可能な個体の問題というより, 牛群全体の問題と捉えられて無線伝送式pHセンサーと第一胃液pH測定システムをおり, 経済的損耗が大きい生産病である [4, 5].

新たに開発した. またこのセンサーを経口的に投与す

SARAの診断には第一胃液性状の検査が必須である.

ると, 第一胃底部に留置されることが, 第一胃フィス第一胃液採取の方法としては, カテーテルを用いた経テル牛を用いた予備実験により明らかにされている.

口的採取法, または穿刺針による第一胃穿刺法が行わ

しかし, そのセンサーを用いたSARA病態解析への応れてきた [1, 7, 8]. 経口カテーテルによる採取では,用について十分なデータの蓄積がない. そのため乳牛技術者および採取部位の違いによって第一胃液pHのの臨床領域において重要な課題となっているSARAの岩手支会

盛岡地域農業共済組合― 51 ―

診断と制御に, 無線伝送式pHセンサーを応用するた運用が可能である.

めの基礎的検討を行った.
２. pHセンサーと採取第一胃液pHの比較
１. 無線伝送式pHセンサーおよび測定システムの構成

Satoら [12] は, フィールドでの無線伝送式pHセSatoら [12, 13] が開発した無線伝送式pH測定シスンサーの有用性を検証するため, pHセンサーと第一テムは牛の第一胃内に留置したpHセンサーからのデー

胃フィステルから採取した第一胃液pH値を, それぞタを受信機で受信し, パーソナルコンピュータ (PC)れの乾物中のデンプン濃度が, 乾乳牛の水準, 高泌乳に表示するものである. 無線伝送式pHセンサーに内牛の水準, 第一胃アシドーシス誘発水準である３種類

蔵されている電源はリチウムイオン電池の異なる飼料を給与した牛で検討した.

(3.6 V：1700 mA) が使用されており, 寿命は10分間隔で測採取第一胃液のpHは6.36±0.23 (96サンプル),定・送信を継続した場合, 平均2.5カ月である. 測定

pHセンサーによるpHは6.22±0.27 (96サンプル) で,データ受信器は, 無線式pHセンサーから送信される

２つの方法による平均値の差は0.14であった. 採取第データ (無線電波) の受信, 無線通信による無線式

一胃液pHとpHセンサーによる測定値との間に有意pHセンサーの動作条件や校正指示を行う.受信機は同(P＜0.01) な正の相関 (r =0.986) が認められた (図１).

時に最大８個までのpHセンサーのデータを受信可能

AlZahalら [9] は, 有線pHセンサーと採取第一胃である. 無線式pHセンサーからの送信電波は, 生体液pHの測定値の差は, 採材中における二酸化炭素おを通過する際に大きく減衰し, 無線式pHセンサーとよび揮発性化合物の損失によると考察している. Sato受信機の距離が制限されることがある.そのため, 測ら [12] の報告では, pHセンサーと採取第一胃液に定データ中継器を無線式pHセンサーの近傍に設置し,よる測定値の差は0.14であり, AlZahalら [9] の報告受信機との中継 (最大500m程度) を行う. 専用アプした差 (0.07) に比べて大きかった. これは, AlZahal

リケーションは, 無線式pHセンサーおよび測定デー

ら [9] の実験では１種類の飼料を１頭の牛で１日３タ受信器を制御するための専用ソフトウェアでWindows回の連続した３日間の測定値を比較しているのに対し,XP, Vista, Windows７等のOS上で動作する.主な役

Satoら [12] の実験では４頭の牛で３種類の飼料給与割は, 無線式pHセンサーからのデータ処理, パーソ前後の測定値を比較したため, AlZahalら [9] の報

ナルコンピュータディスプレイに結果の表示, ハード

告より, pHセンサーと採取第一胃液による測定値にディスクに測定データの記録, 無線式pHセンサーに差が生じたと推測された. しかしこのような条件下な対して測定周期や校正等の動作条件を設定することでがら, 無線伝送式pHセンサーと採取第一胃液のpH測ある. 本無線システムは日本国電波法に定められてい定値との間に高い相関係数が認められ, 無線伝送式

る特定小電力無線 (429MHz帯) を採用し, 無線シス

pHセンサーによるpH測定値の精度が高いことが認めテムは日本国内においては無線従事者資格がなくともられた.

図１

pHセンサーと採取第一胃液におけるpHの比較 (Sato S, Mizuguchi H, Ito K, 2012)― 52 ―

３. 第一胃内の部位別および第一胃と第二胃液pHの激にpHが低下し, 対照飼料牛と異なり第一胃固相部比較よりも底部が低値となる時間帯が認められた (図２).

著者は, 第一胃内の部位別および第一胃と第二胃液両飼料において第一胃液pHに比較し第二胃液pHが高pHの比較について検討を行った. 供試牛には第一胃値であった (図２).

フィステルを装着したホルスタイン種経産・非泌乳牛部位別のpHの関係を検討した結果, 対照飼料給与を用いた. 実験期間の飼料は, 粗飼料主体の飼料 (対期間において, 第一胃固相部と第一胃底部および第一照飼料) と濃厚飼料主体の第一胃アシドーシス誘発飼胃底部と第二胃において相関係数が有意 (P＜0.01)

料 (RAI飼料) を用いた. 給与スケジュールは, 対照であり, 相関係数はそれぞれ0.409および0.826であっ

飼料とRAI飼料をそれぞれ２週間給与し, 乾草のみをた. 一方, RAI飼料給与期間においても第一胃固相部給与する２週間の休止期間を置いた後, 群を入れ替え,と第一胃底部, 第一胃固相部と第二胃および第一胃底再び２週間給与した. 各飼料の給与は, 等量を朝夕２部と第二胃において相関係数が有意 (P＜0.01) であり, 相関回とし, 飲水は自由とした. なお, 第一胃固相部の係数はそれぞれ0.894, 0.764および0.797であった (表１).

pHの測定は, 第一胃フィステルに有線式pHセンサー

飼料変更による第一胃液pHの変化は, 成牛におけを固定して測定した.

るSARA誘発実験において確認されている [14, 15].

対照飼料牛とRAI飼料牛の第一胃液および第二胃液

今回, 飼料の変更による異なる第一胃液pHの変動がpHの日内変動を比較した. 対照飼料を与えた場合,観察された. 対照飼料の給与期間には, 第一胃液pH各部位のpHは朝の給餌直後より穏やかに低下し始め,は高値で安定して推移し, 日内変動の最大値と最小値翌朝までに回復する傾向が見られ, pHは常時, 第二の差は小さかった.このことは, 有効中性デタージェ

胃＞底部＞固相部の順であった (図２). 一方, RAI

ント繊維の高い飼料を給与すると, 咀嚼時間が延長し,飼料を与えた場合, 各部位ともに午後に入ってから急重炭酸塩やリン酸塩を含む唾液の分泌が促進され, さ

図２ 第一胃および第二胃液pHの日内変動 (給与飼料別)Mean±SEM (n=４). a： P ＜0.05, b： P ＜0.01 (各部位９：00との有意差).
第一胃固相部 (○), 第一胃底部 (●), 第二胃 (□).

表１

第一胃内の部位別および第二胃液pHの相関係数 (給与飼料別)
対照飼料

RAI 飼料nrP＜nrP＜

固相部VS.胃底部４0.409

0.01

４0.8940.01

固相部VS.第二胃４0.170NS４0.764

0.01

胃底部VS.第二胃４0.8260.01

４0.7970.01576 サンプル, r：相関係数― 53 ―

らには, 有効中性デタージェント繊維は, 第一胃液およそ12時間後に5.4近くまで低下した. 一方, 対照

pH と 正 の 相 関 関 係 に あ る こ と が 報 告 さ れ て い る

飼料牛の第一胃液pHはRAI飼料牛に比較し, 終日安[16, 17]. RAI飼料牛では, 給餌後に第一胃液pHが速定した高値を示した. RAI飼料牛の第二胃液pHは朝やかに低下する日内変動を示した. これは濃厚飼料にの給餌から約12時間後に6.2付近まで低下した. 一方,含まれる易発酵性炭水化物が第一胃内のデンプン分解

対照飼料牛の第二胃液pHは第一胃液pH同様, RAI飼菌に急速に分解され, 発酵酸の生成が第一胃緩衝作用料牛に比較し, 終日安定した高値を示した. 第一胃液を凌駕したために第一胃内pHが低下したと考えられpHが5.6を３時間以上下回った典型的なSARA牛の第た [18].

二胃液pHは6.3を下回り, その持続時間はおおよそ３Tafajら [19] は, 第一胃マット表面から５−10㎝部時間であった.

分の表層部, 25−35㎝下部の中央部および第一胃底よ第一胃液pHによるSARAの診断は１日のうち第一り５−10㎝上部の３カ所から内容物を採取し, その性胃液pHがおおよそ5.6を下回る持続時間によって判定状を比較した. その結果, 第一胃マット表層部, 中央される [3]. 今回, RAI飼料を与えることによって第部および第一胃底部の順に揮発性脂肪酸 (VFA) 濃一胃液pHが5.6を下回る時間が３時間以上認められた度が高値となり, 第一胃液pHはVFAと負の相関関係ためSARAが誘発されたと判断した. このことは,を示し, 採取部位により第一胃液の性状が異なること

pHセンサーが留置される第一胃底部におけるSARAを示した. また, 今回の検索においてRAI飼料牛では,の診断基準もpH ＜5.6, 持続時間は１日３時間以上朝の給餌から夕方の給餌の間の第一胃液pHは第一胃が適切であることが明らかとなった. また, このよう固相部と比較して第一胃底部が高値であったが, 夕方な典型的なSARA牛では, 第二胃液pHは３時間超にの給餌後は, 第一胃底部の方が低値であった.

わたり6.3を下回った. このことは無線伝送式pHセン

これらのことは第一胃の部位および飼料内容によりサーを用いた第二胃液pHによるSARAの診断基準は,第一胃内環境が異なることを示唆している [1, 6, 20,

pH ＜6.3, 持続時間は１日３時間以上が適した基準21]. 第二胃液pHは第一胃各部液pHに比較し, 常にであることが, Satoら [22] らの報告により明らかと高値で推移した.

なった. 従って, pHセンサーが第二胃に存在していLiら [21]は第一胃の頭側領域が食道に近接しており, 唾液の緩衝作用を受けやすいたる場合でも応用可能であることが明らかとなった.

めと考察している. 第二胃と背嚢部は隣接しているた

SARAによる影響を検討する上で考慮をしなくてはめ, 第二胃液pHは第一胃各部液pHに比較し, 高値でならないのは, 第一胃環境と第一胃上皮である. 第一あったと思われる.

胃液pHが6.0未満である状態が継続するとデンプン分解性の微生物の成長を促進し, セルロース分解性微生

４. 第一胃および第二胃液pHによるSARAの診断物の成長が抑制される. そのうえ, 乳酸利用微生物の第一胃液pHと第二胃液pHを比較し, 両部位の測定

著しい増殖が第一胃液pH5.8で起こり, 第一胃環境の値が高い相関性を示すことが明らかになった. また,変化が生じ始める [18, 23]. さらに, 第一胃液pH第二胃液pHは第一胃液pHと比較して有意な高値を示

5.6で第一胃上皮に変化が生じる [3]. Steelら [24]した. これらのことより, 第二胃液のSARAの診断基は, 乾乳牛を用い, 粗飼料主体から濃厚飼料主体に変

準は, 第一胃液pHによるSARAの診断基準と異なる更した際の第一胃粘膜の形態的変化を観察し, 飼料変ことが考えられる. また, 無線伝送式pHセンサーを更から１週間後, 第一胃乳頭における角質層の広範囲経口的に投与すると通常, 第一胃底部に留置されるが,な脱落および角質層と顆粒層の間に間隙が生ずることセンサーが第二胃に移動する例が認められたため, 第を認めている. このように, SARAは第一胃環境の変二胃におけるSARAの診断基準が必要となった. なお,化によって生じる第一胃粘膜の変化に起因する病態でセンサーの位置の確認は, 外部から金属探知器で容易ある.にできることを予備試験において確認している. その濃厚飼料は第一胃内で乳酸生成を増大させるが, そため, Satoら [22] は, 第一胃フィステルを装着したれに伴いVFA産生量も増加する [25, 26]. この乳酸

ホルスタイン種経産・非泌乳牛に対照飼料およびRAIからのVFA産生が滞るとSARA が発症すると考えら

飼料を給与し, 無線伝送式pHセンサーを使用し, 第れる [26]. また, 第一胃液pHの主なコントロールと一胃底部および第二胃液によるSARAの診断基準を検して, 頂端膜を介した第一胃内へのHCO３ − の取り込討した.

みと血中への解離型短鎖脂肪酸 (SCFA) 放出, 血中Satoら [22] の報告によるとRAI飼料牛の第一胃液へのHSCFAの親油性拡散, 第一胃上皮からの唾液とpHは朝の給餌後, 速やかに低下し, 朝の給餌からお同レベルのHCO３ − の分泌, モノカルボン酸供輸送体― 54 ―

を介した乳酸と水素イオンの排泄が主な第一胃内の[８] Enemark J MD, Jorgensen RJ, Kristensen NB：

pH緩衝作用として提唱されている. つまりVFA自体

An evaluation of parameters for the detection

が緩衝剤としての作用を持つことが考えられているof subclinical rumen acidosis in dairy herds,
Vet Res Commun, 28, 687-709 (2004)[18, 20].
以上のように第一胃上皮からの乳酸およびVFAの[９] AlZahal O, Rustomo B, Odongo NE：Technical

吸収もSARAの病態を考える上で重要である [26].

note: a system for continuous recording of

また第一胃上皮に生息する細菌叢は, 第一胃内細菌叢とruminal pH in cattle, J Anim Sci, 85, 213-217(2007)

種類が異なり, 飼料の違いにより変化することが明らかとなっている [27, 28]. 今後, SARAの病態解明のた[10] Marden JP, Bayourthe C, Enjalbert F：A newdevice for measuring kinetics of ruminal pH

めにも, これらのさらなる解析が期待される [26].

and redox potential in dairy cattle, J Dairy

無線伝送式pHセンサーは, 野外の乳牛におけるSci, 88, 277-281, (2005)

SARAの診断と制御において有効なツールであり, 高泌乳牛を対象とした栄養管理や牛群管理に広く応用可[11] Penner GB, Beauchemin K A, Mutsvangwa

能である. また, 無線伝送式pHセンサーは, 家畜福T：An evaluation of the accuracy and precision

祉の増進に寄与し, 飼養管理の改善と濃厚飼料の効率of a stand-alone submersible continuous ruminal的利用によって生産阻害要因を軽減して, 我が国の酪pH measurement system, J Dairy Sci, 89,

農振興に貢献することが期待される.

2132-2140 (2006)[12] Sato S, Mizuguchi H, Ito K：Technical note：development and testing of a radio transmission

本稿を終えるに臨み, 多大なる御指導を賜りました
岩手大学教授pH measurement system for continuous monitoring

佐藤繁先生に心から深謝いたします.

of ruminal pH in cows, Prev Vet Med, 103,
引用文献

274-279 (2012)[１] Duf field T, Plaizier, JC, Fairfield A：Comparison[13] Sato S, Kimura A, Anan T：A radio transmissionof techniques for measurement of rumen pH in

pH measurement system for continuous

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evaluation of fluid pH in the rumen of cows,(2004)

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ruminal acidosis induces ruminal[15] Oba M, Allen MS：Extent of hypophagia caused

lipopolysaccharide endotoxin release andtriggers an inflammatory response, J Dairy

by propionate infusion is related to plasmaSci, 88, 1399-1403 (2005)

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176, 21-31 (2009)[７] Bramley E, Lean IJ, Fulkerson WJ：The de finition

acidabsorption in the regulation of ruminalof acidosis in dairy herds predominantly fed

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on pasture and concentrates, J Dairy Sci, 91,[19] Tafaj M, Junck B, Maulbetsch A：Digesta

308-321 (2008)

characteristics of dorsal, middle and ventral― 55 ―

rumen of cows fed with different hay qualities[24] Steele MA, AlZahal O, Hook SE：Ruminal acidosis

and concentrate levels, Arch Anim Nutr, 58,

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in a mature dairy cow：A case report, Acta
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lactate turnover and its contribution to volatile
fatty acid production, J Agric Sci, 103, 37-51[21] Li M, Penner GB, Hernandez-Sanabria E：(1984)

Effects of sampling location and time, and hostanimal on assessment of bacterial diversity[26] 三森真琴：亜急性ルーメンアシドーシスにおけand fermentation parameters in the bovine

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subacute ruminal acidosis (SARA) by continuousof Proteobacteria from the rumen by PCR

reticular pH measurements in cows, Vet Res

using

Commun, 36, 201-205 (2012)

methanotrophspecificprimers,

Lett

Appl Microbiol, 35, 251-255 (2002)[23] Mackie RI, Gilchrist FM：Changes in lactate-[28] Chen Y, Penner GB, Li M：Changes in bacterial

producing and lactate-utilizing bacteria indiversity associated with epithelial issue inrelation to pH in the rumen of sheep during

the beef cow rumen during the transition tostepwise adaptation to a high-concentrate diet,a highgrain diet, Appl Environ Microbiol,

Appl Environ Microbiol, 38, 422-430 (1979)

77, 5770-5781 (2011)

マイコプラズマ・ガリセプチカムおよびイルス接種の前, そして実験の最後には両病原体の低病原性鳥インフルエンザ H3N8亜型ウイルスの感染を確認するために, 抗マイコプラズマ抗体およ混合感染に起因した鶏における病理学的病変

び抗ウイルス抗体の存在が検査された. マイコプラ
ズマを感染させた鶏群では, 抗マイコプラズマ・ガ

Stipkovits L, Glavits R, Palfi V, Beres A, Egyed

リセプチカム抗体が発現していたが, 抗インフルエ

L, Denes B, Somogyi M, Szathmary S

ンザウイルス抗体は発現していなかった. インフル

(ハンガリー科学アカデミー獣医学研究所, ハンガリー)

エンザウイルスを感染させた鶏群では, 血清学的にAvian Pathol, 49, 273-283 (2012)

このウイルスに対してのみ陽性を示し, 混合感染させた鶏群では両病原体に対する抗体が発現していた.

実験条件下において, 鶏にマイコプラズマ・ガリセ

LPAI H3N8亜型ウイルス感染では, 体重減少や臨

プチカムおよび低病原性鳥インフルエンザ (LPAI)

床症状は引き起こさず肉眼病変も認められなかった.

A型/マガモ/ハンガリー/19616/07 (H3N8) を感染

マイコプラズマ・ガリセプチカム感染では, マイコさせた. ２つの鶏群は, マイコプラズマ・ガリセプ

プラズマ感染に特徴的な呼吸器症状, 気嚢炎, 腹膜チカム 1226株を噴霧された. ７日後, 一つの鶏群炎引き起こされた. しかしながら, マイコプラズマ・とマイコプラズマを感染させていない鶏群は, LPAIガリセプチカムを単独感染させた群よりもマイコプH3N8亜型ウイルスが接種された. マイコプラズマ・

ラズマ・ガリセプチカムおよびLPAI H3N8亜型をガリセプチカムを感染させた残りのもう一方の鶏群混合感染させた群の方が, 臨床症状や病理学的病変,は, 対照群として残された. ８日後, これらの鶏は安増体の減少などがさらに顕著であった.

楽殺され, 肉眼および組織学的病変について検索された. 体重が測定され, マイコプラズマ接種およびウ― 56 ―(岩手大学獣医病理学研究室)