岩獣会報 (Iwate Vet.), Vol. 36 (№ 3), 87−97 (2010).

総説

カニクイザルの肝臓ペルオキシゾームに対する
di(2-ethylhexyl)phthalateの影響佐竹要

茂１, ２)

御領政信３)

岡田幸助３)

約

カニクイザルがペルオキシゾーム増殖誘導剤に対してどのような反応を示すかについての基
礎的な背景データを得る目的で投与試験を行った. 雄３匹, 雌４匹のカニクイザルにdi(2ethylhexyl)phthalate (DEHP) の1,000mg/kg/dayを28日間経口投与, 対照として, 雌雄各３匹にコーンオイルを同様に投与した. 電子顕微鏡検査では投与開始前に肝臓生検を実施し,投与前と投与後について動物個別に比較した. 肝臓におけるペルオキシゾームおよびミトコン
ド リ ア 関 連 酵 素 で あ る hepatic fatty acid β -oxidation system ( FAOS ) , carnitine
acetyltransferase (CAT) およびcarnitine palmitoyltransferase (CPT) 活性の測定を実施した. 電子顕微鏡検査では, 長軸に沿ったクリステの層状配列を伴ったミトコンドリアの腫大が肝細胞に認められた. 肝ペルオキシゾーム数は, DEHP投与前に比較して増加傾向を示したが,非常に軽微な変化であった. CPT活性の軽微な増加が認められたが, FAOS活性およびCAT活性に変化は認められなかった. ペルオキシゾーム増加およびミトコンドリアの腫大は雌で明確であり, 反応態度に僅かながら雌雄差がある可能性が示唆された. カニクイザルのペルオキシゾーム増殖誘導剤に対する反応は, げっ歯類に比較すると非常に弱いことが確認され, げっ歯類に比較すると, 反応性が低いという点でよりヒトに類似した反応であると考えられた.
キーワード：カニクイザル, 肝臓, ペルオキシゾーム, di(2-ethylhexyl) phthalate

開発段階にある新規薬物や化合物はヒト臨床は中断されるため, ヒトにおける重大な有害作試験に入る前には, 必ず動物を用いた安全性試

用を未然に防ぐ役割を担っている. 最近の傾向

験が実施されている. 一般的に, 安全性試験でとしてカニクイザルが非げっ歯類として安全性

ヒトへの有害性が危惧された場合には, 科学的試験に繁用されている. カニクイザルは, 他に根拠に基づいた説明がされない限り, その開発

非げっ歯類として用いられているイヌに比べ系

１)

岐阜大学大学院連合獣医学研究科病態獣医学連合講座

２)

株式会社新日本科学

３)

岩大支会

岩手大学農学部獣医学科獣医病理学研究室― 87 ―

統発生学的にヒトに近く, 得られた結果をヒト

一方, 霊長類では肝ペルオキシゾームは増加しへ外挿し易い利点がある. 反面, 背景データがなかったという報告は多数あり[1,7,16,25,32],

絶対的に少なく, 特に反応に動物種差が存在す

ペルオキシゾーム増殖誘導剤に対して反応しなる薬物や化合物の安全性評価では苦慮することいという認識が一般的であった. しかし,が多い.

Reddyら[26]は1984年に, フィブラート系薬物

近年, 脂質低下薬あるいは抗糖尿病薬等としciprofibrateが, カニクイザル, アカゲザル,て peroxisome proliferator-activated receptor

ブタ, ネコおよびニワトリ全てに肝ペルオキシ(PPAR) に対する作動薬 (アゴニスト) が注

ゾームの増加を誘導したことを報告した. 同様目されているが, これら薬物・化合物にも大きにHoivikら[8]は2004年に, カニクイザルにな動物種差が存在することはよく知られている.

fenofibrateおよびciprofibrateを投与すると,

PPARは, ペルオキシゾーム増殖誘導剤をリガ

用量依存性に肝ペルオキシゾームが増加したこ

ンドとする核内受容体の一つとして1990年に発とを報告した. カニクイザルでペルオキシゾー

見された[11]核内受容体ホルモンスーパーファ

ム増加が報告された化合物は, いずれもフィブ

ミリーの一つであり, 糖および脂質代謝に関与

ラート系薬物であった. しかし, 他ペルオキシする標的遺伝子を調節している転写因子でもあゾーム増殖誘導剤では, これまでカニクイザル

る. 現在まで, PPARにはPPARα, PPARβでの肝ペルオキシゾーム増加の報告は見当たら

およびPPARγの３種類のサブタイプが確認さない.

れており, 肝臓では主としてPPARαが発現している[11,14,15].

前臨床段階で, ペルオキシゾーム増殖誘導剤の安全性評価をカニクイザルで行う場合, どのペルオキシゾームは動・植物および真核微生
物に広く分布し, 直径約300nmの比較的電子密ような反応を示すか予め把握しておく必要がある.

度の高い細胞内顆粒であり, リソゾームに類似

そこで本研究では, ペルオキシゾーム増殖誘

した形態学的特徴を持つ細胞内小器官である.

導剤に対するカニクイザルの反応を明らかにす

この小器官はD-アミノ酸, 尿酸, L-a-オキシ酸

る目的で, フィブラート系薬物以外の化合物,などを基質とする酸化酵素群とそれを分解する

すなわちdi(2-ethylhexyl) phthalate (DEHP)

カタラーゼを含むことを特徴とし, ミトコンド

を取り上げ検討を行った.

リアとは別の脂肪酸酸化系 (fatty acid β-oxi

DEHPは一般にプラスチック可塑剤として利dation system：FAOS) が見出されている[37].

用されており, 塩化ビニル製品やラッカーの製PPARαアゴニストとして, フィブラート系

造の際に用いられ, 代謝物がPPARαアゴニス

薬物である脂質低下薬, プラスチック可塑剤,

ト作用を有する[20, 23]. 物理化学的性状とし抗糖尿病薬, 脂肪酸, ステロイドが知られておて, 水に溶けにくく, 常温で無色の液体であり,り, 共通して肝ペルオキシゾームを増加させる.

合成樹脂を軟らかくする性質を持っている.

これら別名

DEHPの化学構造は図１に示す通りである.

ペルオキシゾーム増殖誘導剤とも言われるが, 大きな動物種差が認められる[4,DEHPの前臨床データとして, 雄ラットに100

18,24,29]. 一般に, げっ歯類のラットやマウ

mg/kg/dayの用量で14−21日間投与すると肝スはペルオキシゾーム増殖誘導剤に対する感受ペルオキシゾーム増加が誘導される[17,34].

性が高く, ペルオキシゾーム増加と同時に肝細雌雄コモンマーモセットに2,500mg/kg/dayで胞の腫大・増殖, その結果として肝細胞癌を誘13週間[16], 雄カニクイザルに500mg/kg/day

発すること[4,18,24,29]が問題視されている.

で14−21日間[27,34]投与しても肝ペルオキシ― 88 ―

の計13匹を入手し, 実験に供した. 動物は個別にステンレス製ケージ (680mmD×620mmW×770mmH) に収容し, １日12時間の人工照明(07：00〜19：00点灯), 温度範囲：23〜29℃,
湿度範囲：35〜75%, 換気回数：15回／時間の条件下で飼育した. 固型飼料 (Teklad Global
Certified 25% Protein Primate Diet, Harlan
Sprague Dawley Inc., Indianapolis, USA)約108g (約12g ９個) を１日１回14：30〜16：
図１ Chemical structure of di(2-ethylhexyl)
phthalate C24H38O4：molecular weight390.55
Synonyms:1,2-Benzenedicarboxylic acidbis(2-ethylhexyl) ester;bis(2-ethylhexyl) phthalate;dioctyl phthalate; Octoil.

00に与え, 翌日の08：30〜10：00に残った餌をゾームは増加しなかったと報告がある. 2000年

自動給水装置 (Edstrom Industries, Inc., WにWHOは, DEHPは哺乳類において in vivo お

aterford, UK) を用いて自由に摂取させた.

回収した. 投与期間中は投与前に餌の回収を行った. 血液学的検査および血液生化学的検査のための採血前日, 剖検前日は17：00前後に残った餌を回収した. 水道法水質基準に適合した水をよび in vitro ともに遺伝子変異, 染色体異常な

本実験は, 株式会社新日本科学安全性研究所

どの遺伝毒性を示さないこと, DEHP誘発肝臓の動物実験倫理指針に従って実施した.

腫瘍はラットおよびマウスにおいてペルオキシ

群構成：DEHP投与群１群, 溶媒対照群 (対照

ゾーム増加などのnon-DNA-reactiveな機序で群) １群の２群構成とした. DEHPの投与量は発生すること, DEHPに起因するペルオキシゾー

1,000 mg/kg/dayを設定した (表１).

ム増加や肝細胞増殖はラットおよびマウスの癌

雄３匹, 雌４匹のカニクイザルに, コーンオ

原性試験以外では報告がないこと, ならびにヒイルに溶解して調製したDEHPを５mL/kg/day

トの培養細胞およびヒト以外の霊長類においての投与量で１日１回, 28日間, 経鼻カテーテル

DEHPに起因するペルオキシゾーム増加が示さ(二プロネラトンカテーテル, 10Fr, 二プロ株

れていないことを根拠に, ヒトへの発癌リスク

式会社, 大阪) を用いて経口投与した. 対照とはないと結論付けた[40].

して, 雌雄各３匹のカニクイザルにコーンオイ

本研究では, DEHPの大量投与において, カルを５mL/kg/dayの投与量で同様に投与した.

ニクイザルの肝細胞にペルオキシゾーム増加がなお, 投与開始前の馴化期間を４週間設けた.

誘導されるかを検証した.

順化開始週に全例の肝臓の生検を実施した. 肝臓生検後は, 一般状態, 摂餌量, 体重, 血液学

材料および方法

的検査および血液生化学的検査結果から, 動物

化合物：Di (2-ethylhexyl) phthalate (DEHP,
Lot No. 4YNPE, 東京化成工業株式会社, 東京) をコーンオイルに溶解し, 200mg/mLの濃

表１

群構成

被験物質 投与用量 投与液量

濃度に調製した.

動物数

投与液
度

(mg/kg/day)(mL/kg/day) (mg/mL)(動物番号)
雄

雌-3(1〜3)

3(4〜6)

200

3(7〜9) 4(10〜13)

動物および飼育条件：実験用に繁殖され中国

コーンオイル-5から輸入し検疫が終了した３〜５歳のカニクイ

DEHP

1000

5

ザル ( Macaca fascicularis ) 雄６匹と雌７匹

カニクイザルに４週間 (28日間) 経口投与した.

― 89 ―

が十分に回復したことを確認してから投与を開かに遠心分離 (４℃, 1,710 × g, 3,000rpm,

始した.

15分間) して, 得られた血漿を冷凍庫 (許容範

肝 臓 の 生 検 ： 塩 酸 ケ タ ミ ン ( 50mg/mL ,囲：−10℃以下) で凍結保存した. DEHP群のKamud Drugs Pvt. Ltd, Munbai, India) を

血漿中のDEHPおよびその第一代謝物である

筋肉内投与 (0.2mL/kg) し, 麻酔下で剣状軟

MEHPの濃度を, HPLCシステム (Alliance2795,

骨の直下から腹部正中を３〜４cm切開, 内側

ウォーターズ株式会社, Milford, USA), HPLC

左葉の先端部をピンセットでつまみ, 電気メス

カラム (Mightysil RP-18 GP, 4.6mmi.d.x75mm,(MESU-150, 瑞穂医科工業株式会社, 東京)

５μm, 関東化学株式会社, 東京), ならびににて肝組織を切離した. 採取した組織について,

UV 検 出 器 ( 2497 , ウ ォ ー タ ー ズ 株 式 会 社 ,両刃剃刀を用いて, 直ちに電顕用に細切し, 氷Milford, USA) を用いて測定した.

冷した３%グルタールアルデヒドに浸漬固定し得られた血漿中MEHP濃度から台形法によた.

り投与後24時間までの血漿中濃度-時間曲線下

一般状態の観察：馴化期間中は毎日１回, 投与

面積 (AUC0-24h ) を算出した. 血漿中DEHP濃

期間中は毎日３回 (投与前, 投与直後, 投与後

度は検出限界以下のポイントが多く, AUC0-24h

約４時間), 生死の確認とともに一般状態を観は算出できなかった.

察した.

剖検および肝臓重量：28日間の投与が終了した

体重測定：馴化期間中は１週間に１回, 投与期

翌日, 全ての動物の体重を測定後, ペントバル

間中は１週間に２回, 全例の体重を測定した.

ビタールナトリウム (64.8mg/mL, 0.4mL/kg,

摂餌量測定：馴化開始翌日から毎日摂餌量を測

東京化成工業株式会社, 東京) を静脈内注射し,定した. 給餌個数と残餌個数を記録して, 摂餌

麻酔下で放血死させ剖検に供した. 剖検時に,量(g)を算出した.

全例の肝臓重量を測定後, 肝臓組織を採取し,血液学的検査および血液生化学的検査：馴化期

光学顕微鏡検査, 電子顕微鏡検査および肝臓組

間中は肝臓生検実施前, 肝臓生検後２週間およ

織内酵素活性測定に供した.

び３週間の計３回, 投与期間中は投与26日目

光学顕微鏡検査：剖検時に肝臓組織を採取し,(投与開始日を１日目で起算) の計１回実施し直ちに10％中性緩衝ホルマリン液に浸漬固定した.

た. 固定後に組織を切り出し, 常法に従いパラ

血液学的検査には, 大腿静脈より注射器で約フィン包埋, 薄切してヘマトキシリン・エオジ

１mL/個体採血し, EDTA-2Kで抗凝固処理しン染色を施し鏡検に供した.

た全血を使用した. 血液生化学的検査には, 大

電子顕微鏡検査：肝臓生検時および剖検時に,腿静脈から約２mL/個体採血採血し, 室温で20

新鮮な肝臓組織を採取, 細切し, 直ちに氷冷し〜60分間静置後, 遠心分離 (室温, 1710×g,

た３％グルタールアルデヒド溶液に浸漬固定し3000rpm, 15分間) して得られた血清を用いた.

１％オスミウム酸溶液で後固定後, 常法に従いトキシコキネティクス：投与26日目 (投与開始

エポキシ樹脂 (Quetol 812) に包埋した. エポ

日を１日目で起算) に, 投与前, 投与後１, ２,

キシ樹脂包埋標本から超薄切切片を作製し, 酢

４, ６および24時間の６ポイントについて, 全

酸ウランおよびクエン酸鉛の二重染色を施した.

例の大腿静脈からヘパリンナトリウム加注射器

染色した標本から透過型電子顕微鏡 (JEM-

を 用 い て 採 血 し た . 採 血 量 は 約 0.5mL/ 個 体

1200EX, 日本電子株式会社, 東京) を用いて(各採血ポイント, 血漿量として約0.2mL/個体)

写真を撮影し, 観察に供した.

で, 採血した血液は遠心分離まで氷冷し, 速や― 90 ―

全例の各時期 (投与前および剖検時) について, 各動物の小葉中心部および小葉辺縁部を各

表２２ブロック, 計８ブロック/個体の包埋標本か

a. 絶対重量ら超薄切切片を作製し, 酢酸ウランおよびクエン酸鉛の二重染色を施した. ×6,500の倍率にて各切片につき20枚の写真を撮影した. 各動物の各時期に小葉中心部および小葉辺縁部の各40

MaleFemaleGroup Animal No.
(g)
Animal No.
(g)
1
70.6
4
59.4
Com oil
2
70.4
5
44.7
3
79.4
6
61.5
Mean±SD 73.5±5.1 Mean±SD 55.2±9.2

枚の写真について, ペルオキシゾームおよびミ

7
81.1
10
66.2
8
65.3
11
57.2
9
68.0
12
48.9
13
71.9
Mean±SD 71.5±8.5 Mean±SD 61.1±10.1
Not significantly different from the corn oil group.

トコンドリアの計数を実施した. 40枚の写真の

DEHP

総面積は3,300μ㎡に相当した.
肝臓組織内酵素活性測定：剖検時に肝臓右葉を切り離し, 氷冷した生理食塩液で灌流した後,組織の一部 (約２g×２本) を採取し, ただちに液体窒素で凍結した. サンプルは超低温フリー
ザー (許容範囲：−70℃以下) で保管した.
以下の操作は全て氷冷下で実施した. 鋏を用いて肝臓組織を小片に切り刻み, １mmol/L E

肝臓重量

b. 相対重量 (liver weight/body weight)
Male
FemaleGroup Animal No.
(‰)
Animal No.
(‰)
1
16.2
4
22.0
Corn oil
2
17.8
5
19.0
3
20.7
6
18.9
Mean±SD 18.2±2.3 Mean±SD 20.0±1.8

DTAを含むトリス緩衝液 (pH7.4) を肝臓組織

7
19.7
10
24.4
8
20.2
11
25.8
9
21.1
12
20.0
13
24.7
Mean±SD 20.3±0.7 Mean±SD 23.7±2.5
Not significantly different from the corn oil group.

重量の９倍量加えた. これをホモジナイズしてDEHP

10%肝臓ホモジネートを作製した.
10%肝臓ホモジネートにおけるFAOS, CAT
およびCPTの酵素活性を, 井上ら[10]の方法
に従い分光測光器 (U-3010, 株式会社日立製

腫大が, DEHP群の雌１例 (動物番号13) に認作所, 東京) を用いて測定した. 酵素活性単位

められた (図２, ３, ４). ペルオキシゾーム

はの形態およびその他に異常は認められなかった.

μmol/min/g liver とした.

DEHP群の雌において, 肝小葉辺縁部および中結果心部のペルオキシゾーム数が投与前に比較し有剖検および肝臓重量：全例において諸臓器および組織に肉眼的異常は認められなかった. 肝臓
重量では, 雌雄ともに媒体群に比較して有意差は認められなかった. 肝臓重量個別値では, 体重低下がみられなかったDEHP群の雌２例 (動物番号10, 13) において, 絶対および相対重量の軽微な増加が認められた. 媒体群の平均値と比較して, これらの相対重量は22あるいは24%増加していた (表２).
光学顕微鏡検査：全例の肝臓に異常は認められ
図２

なかった.
電子顕微鏡検査：肝細胞において, 長軸に沿ったクリステの層状配列を伴うミトコンドリアの― 91 ―

DEHP群雌の小葉辺縁部肝細胞
投与開始前
異常はみられない.
電子顕微鏡写真 P：ペルオキシゾーム

図３

DEHP群雌の小葉辺縁部肝細胞
投与終了後
ペルオキシゾームの増加およびミトコンド
リアの腫大 (矢印).
電子顕微鏡写真 P：ペルオキシゾーム

図５3,300㎡あたりの肝細胞ペルオキシゾーム数
The monkeys given corn oil in the same way
served as the vehicle control.
Each column and vertical bar shows mean values
and SD of 3-7 animals.
*: P<0.01: significantly different from the values
at pretreatment.

図４

DEHP群雌の小葉辺縁部肝細胞
投与終了後
ペルオキシゾームが増加し, 細長く伸張・腫大したミトコンドリア内にてクリステが長軸の方向に沿って層状に配列している(矢印).
電子顕微鏡写真 P：ペルオキシゾーム

意 (p＜0.01) に増加した. 個体別の増加率は,
小葉中心部で33.3〜111.4%, 小葉辺縁部で38.5〜81.3%であった. ミトコンドリア数に有意差は認められなかった. DEHP群の雄においては,
ペルオキシゾーム数およびミトコンドリア数ともに, 投与前に比較して有意差は認められなかっ
たが, 小葉辺縁部のペルオキシゾーム数は, 平

図６3,300㎡あたりの肝細胞ミトコンドリア数
The monkeys given corn oil in the same way
served as the vehicle control.
Each column and vertical bar shows mean values
and SD of 3-7 animals.

均値が投与前および媒体群と比較しても高値を示していることから, 増加傾向を示したと考えられた. 媒体群との比較においては, 雌雄の小葉辺縁部および中心部ともに, ペルオキシゾー

れなかった (図５, ６).

ム数およびミトコンドリア数に有意差が認めら

肝臓組織内酵素活性測定：DEHP群の雄におい― 92 ―

て, CPT活性が媒体群に比較して有意に増加

一般状態：DEHP群では, 軟便および下痢が全した. 増加程度は, 媒体群の約1.6倍 (媒体群：例においてほぼ毎日認められた. その他, 嘔吐

2.043units VS DEHP群：3.313units) であった.

が雌雄各１例に各１回認められた. 対照群では,

FAOSおよびCAT活性においては, 雌雄とも

軟便が雄２例に各２日あるいは４日認められた.

に媒体群に比較して有意差は認められなかった
(図７).

表３

投与26日目における血漿中DEHP濃度(投与開始日を投与1日目として起算)

トキシコキネティクス：血漿中DEHP濃度を表３に, MEHPの血漿中濃度-時間曲線下面積

Plasma DEHP concentration (g/mL)
Animal No.＼Dosing point (h) 0(pre)

1

2

4

6

24

(AUC0-24h) および濃度推移をそれぞれ表４およ

7

NQ

NQ

NQ

NQ

NQ

NQ

び図８に示した. 血漿中DEHPは, 雌雄各２例

8

NQ

2.0

NQ

NQ

NQ

NQ

において投与後１〜６時間に散発して僅かに検

9

NQ

NQ

NQ

NQ

4.3

NQ

10

NQ

NQ

NQ

NQ

NQ

NQ

11

NQ

NQ

NQ

8.8

9.0

NQ

出されたものの (2.0〜9.0μg/mL), その他の動物およびポイントでは検出限界以下であった.

12

NQ

NQ

NQ

NQ

NQ

NQ

一方, DEHPの第一代謝物であるMEHPの血漿

13

NQ

NQ

2.2

2.4

NQ

NQ

中濃度は, 全例においてDEHP投与後に時間とNQ: Not Quantifiable.

ともに増加した. 血漿中MEHP濃度はDEHP投
与後４〜６時間で最高値に達し, 個別のCmax
は39.2〜70.5μg/mLであり, Cmax平均値は51.3±10.8μg/mLであった. 個別のAUC0-24hは517.6〜1374.2μg・h/mLであり, AUC0-24h 平均値は

表４ The area under the plasma concentrationtime curve of MEHP (AUC0-24h) on
Day 26 (the first day of dosing was
designated as day 1) in cynomolgus
monkeys administrated DEHP at 1,000
mg/kg/day for 28 consecutive days

826.6±271.2μg・h/mLであった.

Male

FemaleGroup Animal No. AUC(g＊h/mL) Animal No. AUC(g＊h/mL)
DEHP

7

921.2

10

766.5

8

1374.2

11

788.8

9

754.3

12

663.4

-

-

13

517.6

Mean±SD 1016.6±320.8 Mean±SD 684.1±123.7
Whole mean±SD 826.6±271.2

図７

Fatty acid -oxidation system (FAOS),
carnitine acetyltransferase (CAT) および
carnitine palmitoyltransferase (CPT) 活性
The monkeys given corn oil in the same way
served as the vehicle control.
Each column and vertical bar shows mean values
and SD of 3 or 4 animals.
*: P<0.05: significantly different from the corn oilgroup.

図８― 93 ―

投与26日目における血漿中MEHP濃度推移(投与開始日を投与1日目として起算)その他の動物に異常は認められなかった.

れる血清中脂質 (トリグリセリド, 総コレステ

体重：DEHP群の雄２例, 雌１例 (動物番号８,

ロール) の低下は認められなかった.

９, 11) において体重減少が認められ, 投与最考

終日の体重が投与開始日に比較して10.0〜24.2％減少した. その他の動物では異常は認められ

察

DEHP群の雌では, 投与開始前に比較して,なかった (図９).

肝小葉辺縁部および中心部の肝ペルオキシゾー

摂餌量：DEHP群の体重減少が認められた雌雄ム数が有意に増加していた. DEHP群の雄では,各１例 (動物番号９, 11) において, 投与前１

有意差は認められなかったが, 投与前および媒および２週目に比較して, 摂餌量が全投与期間

体群に比較して, 肝小葉辺縁部の肝ペルオキシ

を通じて減少した. その他, 一時的に摂餌量がゾーム数が高値を示した. これらの結果は,減少した動物がいたが, ばらつきの範囲と考え

DEHPの大量投与が, カニクイザルにおいて肝られた (図10).

ペルオキシゾーム増加を誘導したことを示唆し血液学的および血液生化学的検査：好中球数,ていた. 一方, 肝ミトコンドリア数は, DEHP

好中球比率, トリグリセリドおよび血中尿素窒群の雌雄ともに増加しなかった. 媒体群との比素の増加, ならびにブドウ糖の減少が, 体重お較では, 肝ペルオキシゾーム数は雌雄ともに有よび摂餌量減少を示したDEHP群の雌１例 (動意差は認められず, 肝臓ホモジネートにおける物番号11) に認められた. その他の動物およびペルオキシゾーム関連酵素活性にも有意差は認検査項目では異常は認められなかった. また,められなかった. これらの結果は, カニクイザ

全例において, PPARαを介した作用と考えら

ルにおけるDEHP投与に起因した肝ペルオキシ
ゾーム増加が, 非常に軽微であると考えられた.
著者らの過去の結果[33]では, ミトコンドリ
アのクリステの長軸に沿った層状配列を伴う腫大がDEHP 1,000mg/kg/day群の雌２例に認められた. これら２例では, 摂餌量減少に伴って10.7%あるいは11.7%の体重減少がみられ, 栄
養不良がミトコンドリアの形態変化に関与した可能性が推察された. 今回の実験では, ミトコ
ンドリアの形態変化を示した動物に体重減少は認められなかった. ペルオキシゾーム増殖誘導

図９ 体重推移 (投与開始日をDay 1として起算)剤とミトコンドリアの変化については, DEHPがラットにおいてミトコンドリアの大きさと数を増加させた例[21, 22], ciprofibrateおよび
fenofibrateがカニクイザルにおいてミトコンド
リア数の増加およびミトコンドリアの伸長を誘発した報告[8]がある. ペルオキシゾームとミトコンドリアは, PPARαアゴニストが関連する代謝系に, 相互に密接に関係している. した図10

摂餌量推移 (投与開始週をWeek 1として起算)

がって, 今回の実験で認められたミトコンドリ
アのクリステの長軸に沿った層状配列を伴う腫― 94 ―

大は, DEHPの肝細胞への直接の影響に起因し

4,9,12,13,18,26,29-31]. 加えて, リガンドごた可能性が高いと考えられた.

とにPPARαへの親和性が大きく異なることも

CPTはミトコンドリアの脂肪酸酸化関連酵

報告されている[13]. カニクイザルのDEHPに素 と し て よ く 知 ら れ て い る . CPT 活 性 は ,対する反応が弱いことは, これらの違いで説明

DEHP群の雄で増加し雌では変化がみられなかっできるかもしれない.

た. 一方, ミトコンドリアの形態変化は雌のみ

トキシコキネティックスでは, 未変化体であに認められた. したがって, ミトコンドリアのる DEHP は 血 漿 中 に ほ と ん ど 検 出 さ れ ず ,形態変化とCPT増加の関連は不明であった.

MEHPが検出された. MEHPはDEHPの第一代ラットにおいて, フィブラート系薬物の投与に謝物であり, PPARαアゴニストとして作用す

よって肝臓のCPT, FAOSおよびCAT活性がる . DEHP の 代 謝 に お け る 最 初 の 段 階 は ,２〜５倍あるいはそれ以上に増加し, 血清中脂MEHPと2-ethylhexanolへの加水分解である.

質が減少することが報告されている[37]. 今回

MEHPへの加水分解は腸において急速になさの実験では, DEHP群雄のCPT活性は対照群のれ, その後の加水分解は腸からの吸収後に起き1.6倍程度であり, 血清脂質に変化は認められる[32,38]. 加えて, MEHPの加水分解は, 血なかった.

液サンプル中の血漿リパーゼによっても起きる

電子顕微鏡検査における形態変化およびペル[25]. 血漿サンプルの分離時あるいは保存期間

オキシゾーム数の変化は雄よりも雌において明中に, DEHPからMEHPへの加水分解が進んで確であった. 雌雄ともに変化は軽微であるためいた可能性は否定できなかった. 今回の実験の雌雄差も小さいものであるが, カニクイザルの血漿中DEHPおよびMEHP濃度は真の値を示し

ペルオキシゾーム増殖誘導剤に対する反応に雌てない可能性があるが, 血漿中MEHP濃度の雄差がある可能性が示唆された. ペルオキシゾー

上昇は, 消化管からのDEHPの吸収が十分であっム増殖誘導剤に対する反応の雌雄差について,たことを裏付けている.

crofibrateのラットへの投与では雌よりも雄で本結果から, DEHPはカニクイザルにおいて感受性が高いことが報告されており[35,36],

肝ペルオキシゾーム増加を誘導することが判明

テストステロンの影響に起因することが示唆さした. しかしながら, その程度は非常に軽微でれている[35]. 今回の実験結果は, これらラッ

あ り , 肝 細 胞 の 腫 大 や 増 殖 は 認 め ら れ ず,

トにおける過去の報告と異なっている. カニク

DEHP暴露量も非現実的に高いレベル (1,000

イザルではテストステロン以外の因子が関与しmg/kg/day) であった. 対照的に, ラットでている可能性がある. また, 過去のDEHPをカ

はDEHP 100mg/kg/dayの投与量でペルオキ

ニクイザルに投与した報告では, いずれも雄のシゾーム増加が誘導される[17,27].

動物に投与していた[27,34]. 現時点まで, カ

また, カニクイザルがペルオキシゾーム増殖

ニクイザルにおいてDEHP誘発の肝ペルオキシ

誘導剤に対して感受性を有することが再確認さゾーム増加の報告がなかったのは, 反応に雌雄れ た . Reddy ら [ 28 ] お よ び Hoivik ら [ 8 ] は ,差がある可能性を示しているとも考えられた.

fenofibrateおよびciprofibrateの投与量を上げ

PPARαの発現程度, PPARαアゴニストにることによって, カニクイザルにおいて用量依

対する反応 (受容体活性, ペルオキシゾーム増存性に肝ペルオキシゾーム増加が誘導されるこ加, 標的遺伝子の誘導などにおける相違) にはとを報告した. ヒトでは, 肝細胞はペルオキシ

種差があり, げっ歯類が他の種に比較していず

ゾーム増殖誘導剤に対して感受性が無いことがれも高いことは, 多くの実験が示唆している[2-報告されている[19,39]. 一方, Ganningら[5,6]― 95 ―

は, 腎臓透析患者において, 肝臓生検の結果か[２]

Cariello NF, Romach EH, Colton HM,ら肝ペルオキシゾームが増加しており, 透析にNi H, Yoon L, Falls JG, Casey W,

使用されたプラスチック製のチューブおよびバッ

Creech D, Anderson SP, Benavides

グから溶出したフタル酸エステル (DEHP含む)

GR, Hoivik DJ, Brown R, Miller RT:
Toxicol Sci, 88, 250-264 (2005)

が原因と結論している.
ただし, ペルオキシゾーム増殖誘導剤の毒性

[３]

BG ,

学的問題は, ペルオキシゾーム増加そのものでSwenberg

Williams

はなく, 肝臓の発癌リスクにある. カニクイザ
ルのフィブラート系薬物への反応がげっ歯類とDoull J, Cattley R, Elcombe C, Lake
G,J,

Wilkinson

GemertMV:

C,

Toxicol

Pharmacol, 29, 327-357 (1999)[４]

Fahimi HD, Baumgart E, Beier K,は異なり, 肝細胞増殖の傾向が認められず, 酸

Pill J, Hartig F, Volkl A: Peroxisomes,

化ストレスに関与することが知られているほと

Biology and Importance in Toxicology

んどの蛋白のmRNA発現が顕著でなかったこ

and Medicine. Gibson G, Lake B,eds,となどから, Hoivikら[8]は, 霊長類にはPPAR

395-424 Washington: Taylor and Francis.

を介した肝臓発癌に抵抗性がある可能性を示唆している. これまで, ペルオキシゾーム増殖誘
導剤がヒトを含む霊長類で肝臓発癌を誘発した(1993)[５]

Ganning AE, Brunk U, Dallner G:
Hepatology, 4, 541-547 (1984)[６]という報告は見当たらない.

Ganning AE, Brunk U, Edlund C,
Elhammer A, Dallner G: Envir Heal

DEHPがヒト以外の霊長類でペルオキシゾー
ム増加を誘導したという報告は見当たらず, 本Perspec, 73, 251-258 (1987)[７]

Graham MJ , Wilson SA , Winham

研究結果は, 毒性研究において貴重な基礎デー

MA, Spencer AJ, Rees JA, Old SL,

タを示した. また, カニクイザルのDEHPに対Bonner FW: Fundam Appl Toxicol,

する反応は, げっ歯類の反応に比較すると, 反

22, 58-64 (1994)

応性が低いという点で, よりヒトに近いと考え[８]

Hoivik DJ, Qualls CW Jr., Mirabile
RC, Cariello NF, Kimbrough CL, Colton

られた.

HM, Anderson SP, Santostefano MJ,
Morgan RJ, Dahl RR, Brown AR,
謝辞Zhao Z, Mudd PN Jr., Oliver WB Jr.,

本研究を終えるにあたり, 御助言を頂きましBrown HR, Miller RT: Carcinogenesis,

た岩手大学農学部獣医学課程獣医薬理学研究室の古濱和久教授, 岩手大学農学部獣医学科獣医25, 1757-1769 (2004)[９] Holden PR , Tugwood JD: J. Mol.
Endocrinol, 22, 1-8 (1999)

病理学研究室の沼宮内茂先生に謹んで感謝申し上げます. また, 本研究にご協力を賜りました[10]

Yakkagaku Jikken Koza 3, Hirokawa

株式会社新日本科学安全性研究所の各位に心よPublishing Co. Tokyo , pp. 100-112

り感謝いたします.

(2002)
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