ヒト脂腺細胞に代るハムスター脂腺細胞を用いた皮脂代謝に関する基盤研究東京薬科大学

佐薬学部第１生化学教室

藤隆

Sebaceous gland is one of important skin appendages and sebum exertion is considered to associate withmaintaining normal cutaneous functions. Development of sebaceous glands is dependent on androgens in vivo andsebocytic differentiation sequentially occurs with accumulating abundant cytoplasmic lipids. In addition, the abnormal
augmentation of lipogenesis causes the sebaceous gland disorder such as acne vulgaris. However, the regulation of lipid
metabolism in sebaceous glands remains unclear. We have recently established the culture system of hamster sebocytes
from the auricles, and investigated the regulation of lipid metabolism in the cultured hamster sebocytes. Insulin,interleukin 6 (IL-6) and prostaglandin F2α(PGF2α) were found to augment the accumulation of intracellular lipid droplets,
whereas epidermal growth factor (EGF) suppressed in hamster sebocytes. The regulation of lipogenesis by these factors
was due to the alteration of intracellular triglyceride (TG) level. On the other hand, perilipin, which is located exclusively
at the surface of intracellular lipid, mainly TG, and may participate in the lipid metabolism in adipocytes, was found to
be expressed on the surface of lipids accumulated in hamster sebocytes. Furthermore, the expression of perilipin wasaugmented by insulin and IL-6 along with the lipid formation. These results suggest that insulin, IL-6 and PGF2α areendogenous modulators for lipogenesis in hamster sebocytes, and that perilipin may be involved in the formation of lipid
droplets and the regulation of lipid metabolism in hamster sebocytes.

１．緒であると考えている。一方、多様な皮膚機能調節には増殖

言因子、サイトカインやホルモンなど種々の生理活性物質が皮膚は生体の最も外側に位置する器官であり、外界の寄与することが示唆されており８〜 10）、これら因子が皮脂刺激から体を保護するためのいくつかの機能を備えてい産生調節に対しても何らかの作用を示すことが推察される。

る。皮脂腺からの皮脂の分泌も皮膚機能のひとつに挙げら

そこで、本研究ではハムスター脂腺細胞を用いて、１）上れ、皮膚表面を覆う弱酸性の脂質層を形成し、外的物質の皮成長因子（EGF）、インスリン、インターロイキ 6（IL—

侵入防止や脂溶性有害物質の排泄など重要な役割を担って6）やプロスタグランジン（PG）類の皮脂産生に対する影いると示唆されている 。また、皮脂はその過剰分泌によ響を検討した。また、脂肪細胞において同定された細胞内り，脂漏性皮膚炎やニキビの発症、肌のてかりといった健

２）の脂質蓄積の調節分子であるペリリピン 11、12）に着目し、康および美容上の好ましくない現象を引き起こすことが知脂腺細胞における皮脂の蓄積とペリリピンの発現制御につられている 。一方、皮脂腺における脂質生合成調節に関いて検討した。

１）

２）

しては、脂腺細胞の単離培養が困難なことから、動物実験

２．実を用いた組織学的検討や皮表脂質の組成分析がなされてきた３〜５）。最近になり、ヒトおよびラットの脂腺細胞が単離

２. １

験

細胞調製と処理方法、細胞レベルでの研究が進みつつある。しかハムスター脂腺細胞を定法 13）により５週齢の雄ゴールしながら、脂腺細胞における皮脂産生調節の詳細に関してデンハムスターの耳介部より単離し、６％ウシ血清と２は、ほとんど明らかにされていないのが現状である。

％ヒト血清を含む DMEM/F—12 培養液において培養した。

培養され

６、７）

我々は、ハムスターの耳介部より自発的に脂質を細胞内細胞を播種後，翌日に EGF（10 ng/mL）、インスリン（20に蓄積し、継代かつ長期培養が可能な脂腺細胞を樹立した。

nM）、IL—6（5 ng/mL）または PGF 2α（10 µM）を添加しまた、その細胞特性がヒト脂腺細胞と類似していることかた培養液で培養した。培養液は３日ごとに交換し、11 日

ら、皮脂腺の研究においてヒト脂腺細胞に代る有用な細胞間培養した。

Molecular mechanism of intracellularlipid metabolism in hamster sebocytes invitro

２. ２

Oil red O 染色とペリリピンの免疫染色法

細胞内に脂質を蓄積した細胞を４％中性ホルマリン溶液で固定して、oil red O 染色液で細胞内脂質を染色した。

Takashi Sato

また、細胞内のペリリピン局在は、同様に固定した細胞にDepartment of Biochemistry, Tokyo
University of Pharmacy and Life Science,
School of Pharmacy

おいてマウスペリリピン抗体（愛媛大学医学部 澄田道博博士より供与）を用いて蛍光抗体法により検出した。

− 101 −

２. ３

細胞内トリグリセリド量の定量ハムスター脂腺細胞の細胞内脂質の組成としては、トリグリセリド（TG）が総脂質量の約 70％を占めることを確認していることから、薬物処理した細胞中の TG 量を測定した。すなわち、
0 . 25％トリプシン / 0 . 02％ EDTA 溶液を用いて回収した細胞を超音波細胞粉砕装置により細胞を破壊して試料とし、細胞内の TG 量を市販の TG 測定キットを用いて定量した。

２. ４

ウエスタンブロット法によるペリリピン発現調節の解析
薬物処理した細胞を１％ nonidant P ─
40 10 . 1％ SDS で溶解し、10 , 000 rpmで遠心した後の上清を試料として、マウスペリリピン抗体を用いて ECL—ウエスタンブロット法によりペリリピン発現調節を解析した。また、試料中のタンパク質量を Lowry 法 14）により定量した。さらに，ペリリピンは脂肪細胞でその発現が報告されていることから、インスリン処理により分化させた
マウス 3 T 3 L 1 細胞の試料をペリリピンのポジティブコントロール 15）とした。

３．結３. １

図１

果ハムスター脂腺細胞の皮脂産生調節

培養ハムスター脂腺細胞の脂質産生調節

ハムスター脂腺細胞は自発的に脂質を細胞内に蓄積し（図１A）、その割合は全細胞数の約 40％であることをフローサイトメトリーにより確認している。細胞をインスリン（20 nM）で処理すると細胞内脂質の蓄積に依存して oil
red O 染色陽性細胞数の増加が観察された（図１B）。また、IL—6（5 ng/mL）および PGF 2α（10 µM）の処理においても同様の結果が観察された（図１D および E）。しかしながら、EGF（10 ng/mL）を処理した細胞では細胞内脂質の減少が観察された（図１C）。一方、各処理における細胞内 TG 量を測定したところ、インスリン（20 nM）処理により細胞内量は 3 . 3 倍に増加し、IL—6（5 ng/mL）および PGF 2α（10 µM）処理においてもそれぞれ 2 . 0 倍増加することが明らかとなった。また逆に、EGF（10 ng/mL）処理では細胞内 TG 量は未処理群の 10％まで減少した（図２）。

３. ２

ハムスター脂腺細胞におけるペリリピン発現

細胞内脂肪の代謝に寄与するペリリピンは、脂肪細胞

図２ インスリン、EGF、IL-6 および PGF２α によるハムスター
脂腺細胞の皮脂産生調節
Lane 1, 未処理群；lane 2, インスリン（20nM）；lane 3,EGF（10ng/mL）；lane 4,IL-6（5ng/mL）および lane 5,PGF2α（10 M）. ***p<0.001（vs control）.

− 102 −

ヒト脂腺細胞に代るハムスター脂腺細胞を用いた皮脂代謝に関する基盤研究

11、12、15）や副腎皮質細胞 16、17）においてのみその発現が認めた、IL—6（5 ng/mL）処理においてもペリリピン発現は促られているが、脂腺細胞の皮脂形成にも寄与するか否かに進される傾向を示した（図４）。しかしながら、EGF（10 ng/ついては全く不明である。そこで、ハムスター脂腺細胞にmL）処理では皮脂産生抑制に比例してペリリピン発現はおけるペリリピン発現を蛍光染色法により検討した。その抑制された（図４）。一方、皮脂産生を促進した PGF 2α は

結果、インスリン処理により皮脂産生を促進させた細胞にインスリンおよび IL—6 とは異なり、ペリリピン発現にはおいて、細胞内脂肪滴の周囲にリング状のペリリピンの染全く影響を及ぼさなかった（図）。これらの結果より、ハ色が認められた（図３）。この結果より、ハムスター脂腺

ムスター脂腺細胞のペリリピン発現はインスリンおよび細胞において細胞内の脂質蓄積とともにペリリピンが発現IL—6 により促進されること、また EGF 処理により抑制さすることが初めて明らかとなった。また、そのタンパク質のれることが初めて明らかとなった。

局在が脂肪細胞と同様に脂肪滴周囲であることが判明した。

３. ３

４．考察ハムスター脂腺細胞のペリリピン産生調節

皮脂腺における皮脂の産生は、男性ホルモンにより促進ハムスター脂腺細胞の皮脂産生調節に寄与するインスリ

的に、ビタミン A（レチノイン酸）により抑制的に調節さン、EGF、IL—6 および PGF 2α のペリリピン産生に対するれることが周知の事実である１、３、４）。また、ヒトおよび作用を検討した。その結果、ハムスター脂腺細胞においラット脂腺細胞においても同様の報告がなされている６、７）。て恒常的にペリリピンが発現しており、分化したマウス

皮膚機能調節にはホルモンやサイトカインといった様々な3 T 3—L 1 脂肪細胞に発現されたペリリピンと免疫学的に同生理活性物質が寄与すると示唆されることから８〜 10）、皮脂一であることが判明した（図４および５）。また、この脂腺の脂質代謝調節にもこれら因子が関与することが推察さ

腺細胞のペリリピンはウエスタンブロット法により分子量れる。本研究において、インスリン、IL—6 および PGF 2α がが約 57—kDa であることから、現在報告されている４つのハムスター脂腺細胞の皮脂産生を促進すること、また EGFペリリピンアイソタイプのペリリピン A 12、16） であることは皮脂産生を抑制することが判明した。したがって、イが明らかとなった。一方、インスリン（20 nM）処理によンスリン、IL—6 および PGF 2α は皮脂産生促進因子として、りその発現は 1 . 4 〜 2 . 0 倍増加した（図４および５）。まEGF は皮脂産生抑制因子として機能するものと示唆される。
ペリリピンの機能は十分に明らかにされていないが、脂肪細胞においてその発現促進と細胞内の脂質蓄積が相関することが報告されている 11、15 〜 17）。また、ペリリピンはcAMP 依存性プロテインキナーゼ A（PKA）によりリン酸化されることが知られており 18）、このペリリピンのリン酸化によりホルモン感受性リパーゼによる細胞内脂質の分解が促進されることが報告されている 19、20）。すなわち、ペリリピンは脂肪細胞の細胞内脂質の蓄積と代謝を制御する機能タンパク質であると示唆される。本研究において、ハムスター脂腺細胞内に形成された脂肪滴の周囲にペリリピンが発現していることを初めて明らかにした。このことは、脂肪細胞と同様にハムスター脂腺細胞においてもペリリピンが細胞内の脂質代謝に関与することを示唆するものである。
ペリリピンの発現調節に関しては、脂肪細胞において

図３

ハムスター脂腺細胞におけるペリリピン発現腫瘍壊死因子（TNF—α）がその発現を抑制し、それに伴い細胞内脂質分解が誘導されるという報告のみである 20）。
本研究において、脂質合成を促進するインスリンや IL—6 が

図４ インスリン、EGF および IL-6 によるハムスター脂腺細胞のペリリピン発現調節
Lane 1, 未処理群；lane 2, インスリン（20nM）；lane 3,EGF（10ng/mL）および lane 4, IL-6（5ng/mL）. 3T3，分化誘導したマウス 3T3 細胞 .

図５ PGF 2α によるハムスター脂腺細胞のペリリピン発現調節
Lane 1, 未処理群；lane 2, インスリン（20 nM）；および
lane 3, PGF2α（10M）.

− 103 −

ペリリピン発現を促進すること、逆に脂質合成を抑制する
EGF ではその発現が抑制されることを初めて明らかにしkeratin expression of cultured human sebocytes invitro, J. Invest. Dermatol., 96 , 792 - 797 , 1991 .

た。すなわち、ハムスター脂腺細胞において、これらサイ

７）Rosenfield RL, Eplewski D, Kentsis A, et al., :トカインや増殖因子によるペリリピン発現制御に起因してMechanisms of androgen induction of sebocyte

皮脂産生が調節されているものと示唆される。

differentiation, Dermatology, 196 , 43 - 46 , 1998 .

一方、ハムスター脂腺細胞において PGF 2 α は皮脂産生

８）Birnbaum JE, Sapp TM, Moore JB, : Effects ofを促進したもののペリリピン発現には影響を及ぼさないこ

reserpine, epidermal growth factor, and cyclicとが判明した。ペリリピンは、その発現制御のみならず

nucleotide modulators on epidermal mitosis, J. Invest.

PKA 依存的リン酸化による分子修飾により脂質分解が促

Dermatol., 66 , 313 - 318 , 1976 .

進される 18）。逆に、細胞内脂質分解を制御する分子機序９）Kupper TS, Min K, Sehgal P, et al., : Production

として、プロテインホスファターゼによるペリリピンの脱of IL- 6 by keratinocytes. Implications for epidermal

リン酸化機構が存在することも報告されている ）。した

inflammation and immunity, Ann. NY Acad. Sci., 557 ,がって、現時点では皮脂産生を促進する PGF 2 α がペリリ

454 - 465 , 1989 .

21

ピン発現に影響を及ぼさない理由は不明であるが、PGF 210）Sato T, Kirimura Y, Mori Y, : The co-culture of

α がペリリピンのリン酸化機構を制御することで皮脂産生

dermal fibroblasts with human epidermal keratinocytesを調節している可能性が示唆される。

induces increased prostaglandin E 2 production and５．総cyclooxygenase 2 activity in fibroblasts, J. Invest.

括Dermatol., 109 , 334 - 339 , 1997 .

ハムスター脂腺細胞の皮脂産生は、インスリン、EGF11）Greenberg AS, Egan JJ, Wek SA, et al., : Perilipin,

および PGF 2 α により促進的または抑制的に制御されるこa major hormonally regulated adipocyte-specificとが示唆される。また、ハムスター脂腺細胞において細胞phosphoprotein associated with the periphery of lipid

内脂質の代謝調節分子であるペリリピンが細胞内脂肪滴周storage droplets, J. Biol. Chem., 266 , 11341 - 11346 , 1991 .

囲に発現していることを初めて明らかにした。さらに、こ12）Greenberg AS, Egan JJ, Wek SA, et al., : Isolation ofのペリリピン発現がインスリンや EGF により促進的また

cDNAs for perilipin A and B: Sequence and expressionは抑制的に制御され、その結果、脂腺細胞の皮脂産生が調of lipid droplet-associated proteins of adipocytes, Proc.

節されるものと示唆される。

Natl. Acad. Sci. USA, 90 , 12035 - 12039 , 1993 .
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