化粧品向けナノ粒子の安全性評価を目的とした
in vitroスクリーニングシステムの構築
─物理・化学的性状と安全性との関連─
産業医科大学産業生態科学研究所

堀 江

祐 範

Nanoparticles, particularly TiO2, ZnO and SiO2 are frequently used for cosmetics such as foundation and sunscreen.
Although the nanoparticles are useful materials for cosmetics, toxic effect are also reported. In the present study, cellular
influences of TiO2, ZnO and SiO2 nanoparticles were examined. ZnO nanoparticles showed strong cytotoxicity on humankeratinocyte HaCaT cells. ZnO nanoparticles also caused oxidative stress, induction of cytokines and cell membrane
damage. On the other hand, cellular effect of TiO2 and SiO2 nanoparticles were small. Zn2+ released from ZnO nanoparticles
was most important factor for cytotoxicity of the ZnO nanoparticles. Gene expression of metallothionein (MT) was enhancedby ZnO nanoparticle exposure in HaCaT cells and 3D skin model. ZnO nanoparticles caused induction of cytokines on 3D
skin models. These results suggest that ZnO nanoparticles have cytotoxic potential. And the MT gene expression may bepromising biomarker for toxic effect of nanoparticles on cosmetics.

１．緒

ナノ粒子の生体影響においては、粒子投与による細胞応答

言と共に、溶解性の把握が重要である。化粧品におけるナノナノ粒子は、直径が 1 − 100 nm の範囲にある粒子と定粒子の利用では、皮膚への塗布が最も主要な曝露ルートで義される（ISO/TS 27687 : 2008）。粒径が微小であるナノある。皮膚は表皮のバリアが存在するが、ナノ粒子と細胞

粒子は光の散乱が小さく、ファンデーションや日焼け止めとが直接出会う機会が考えられることから、化粧品に利用などに配合し肌に塗布した場合に滑らかに肌になじみ、いされるナノ粒子の細胞影響の把握は、より有効な利用のた

わゆる粉っぽさを生じない事や、紫外線吸収効果など化粧めに必須である。本研究では、化粧品に多く用いられるナ

品として有用な機能をもつ。ナノ粒子のなかでも、従来かノ粒子のうち、TiO 2、ZnO、SiO 2 について特に溶解性にら化粧品材料として利用されてきた二酸化チタン（TiO 2）

着目して細胞影響を検討した。さらに、皮膚３次元モデル

や酸化亜鉛（ZnO）、二酸化ケイ素（SiO 2）のナノ粒子は、を用い、より実際の皮膚に近い状態での実験も行い、ナノさらなる機能付加の余地もある有望な化粧品材料である。

粒子の影響を推測する有効なマーカーを検討した。

一方で、ナノ粒子には毒性を含む生体影響も報告されてい２．実る。ナノ粒子による生体影響を細胞レベルで見ると、多くの場合酸化ストレスを生じる。酸化ストレスにより細胞の

2 .1

験

細胞および皮膚３次元モデル

抗酸化系が活性化されるが、抑制しきれない場合にはアポヒトケラチノサイト由来 HaCaT 細胞（German Cancer

トーシスやネクローシスによる細胞死に至る。これらナノResearch Center より入手）を用いた。HaCaT 細胞は 10％粒子の細胞影響因子として、ナノ粒子からの金属イオンの

ウシ胎児血清（FBS）添加ダルベッコ変法イーグル培地

溶出が最も重要である。ナノ粒子の特徴の一つに「溶けや（DMEM）中で、５% CO 2 条件下、37℃で培養した。コラすい」
ことが挙げられる。従来不溶性とされてきた物質でも、ーゲンビトリゲルは AGC テクノグラスから購入し、取扱

ナノ粒子とすることで大きな溶解性を示す場合がある 1）。

説 明 書 に 従 っ て 片 面 に HaCaT 細 胞 を 10 % FBS 添 加

例えば、皮膚に塗布されたナノ粒子が、「金属イオンの供

DMEM 中、２×105 個 /ml の濃度で植え、培養した。皮膚給源」として持続的に金属イオンを溶出し、皮膚細胞に対

３次元モデルとして、EPI- 200 SIT を倉敷紡績（大阪）からして影響を及ぼすかもしれない。一方ですべてのナノ粒子

購 入 し、 取 扱 説 明 書 に 従 い 使 用 し た。 培 地 は EPI- 100 -が大きな溶解性を示すわけではなく、ナノダイアモンドな

NMM-SIT/Assay Medium（MatTek Corporation）を用い

2）

ど「溶けない」ナノ粒子の細胞影響は小さい 。そこで、

Safety evaluation of nanoparticles used
for cosmetics; Association of physical/
chemical properties and safety
Masanori Horie
I nst it ut e of I ndu st r i a l E c o l og ic a lSciences, University of Occupational andEnvironmental Health, Japan

た。

2.2

ナノ粒子

本研究では５種類のナノ粒子を使用した。TiO 2 は水酸
化アルミニウム（Al（OH）
3）によって処理された化粧品グ
レードのルチル型ナノ粒子を用いた。また、ZnO ナノ粒
子を石原産業（大阪）より購入した。SiO 2 コーティング
ZnO ナノ粒子は、昭和電工より購入した。SiO 2 ナノ粒子

− 158 −

化粧品向けナノ粒子の安全性評価を目的とした in vitro スクリーニングシステムの構築―物理・化学的性状と安全性との関連―は電気化学工業より購入した。これらのナノ粒子の一次粒価した。12 穴マルチウェルプレートに細胞を 2 × 105 個 /

子径・比表面積等の物性を表１に示す。以下、各粒子は表ml で植え、37℃で一晩培養しウェル底面に接着させた。

１に示した略号で表記する。培養上清中の Zn 2 + 濃度は、６時間および 24 時間培養した後に、上清を回収した。ビ

3）と 同 様 に 2（5- -Bromo- 2 -pyridylazo）- 5［N-n-トリゲルでは、細胞側の培地を回収した。皮膚３次元モデpropyl-N-（3 -sulfopropyl）amino］phenol, disodium salt,

ルでも培養液を回収した。これらの培養液を 13000 rpm、

dihydrate（5 -Br-PAPS）を用いた比色法によって測定した。

５分の遠心し、大部分の粒子を除去したのち、LDH 活性各培地中での溶解度の測定は以下の様に行った。ZnO おを測定した。LDH 活性の測定は、細胞障害性検出キット

よび ZnO-S をそれぞれ 1 . 0 および 10 mg/ml の濃度で蒸留

PLUS（LDH）（ロシュダイアグノスティクス）を用い、プ

水、DMEM（FBS を含まない）、10 % FBS 添加 DMEM お

ロトコルに従って行った。マイクロプレート、ビトリゲル

よび EPI- 100 -NMM-SIT/Assay Medium 中に２分間の超音による試験では、漏出 LDH は下記の式により算出した。

先の報告

波処理後、37℃で６時間保持した。その後、13000 rpm で
10 分間の遠心後、上清を Nanosep Centrifugal Devices 3 K（Pall Life Sciences）を用いた限外ろ過によって粒子を除（陽性対照の吸光度－陰性対照の吸光度）
細胞毒性（％）＝（サンプルの吸光度－陰性対照の吸光度）去した。通過液について、Zn 2 + 濃度を測定した。先行研

ここで陰性対照は非投与細胞の吸光度、陽性対照はキッ

究により、本研究で用いた TiO 2 および SiO 2 は培地中でほト添付の細胞溶解液で強制的に溶解させた細胞の吸光度と4）する。皮膚３次元モデルではウサギ筋肉由来 LDH（オリとんど溶解しないことを確認している 。

エンタル酵母）によって検量線を作成し、漏出した LDH

2.3

ナノ粒子分散液の調製活性を測定した。

ナノ粒子は、使用前に 180℃、２時間の乾熱滅菌を行った。マイクロプレート及びビトリゲルを用いた試験では、

2.5

細胞内 ROSレベルの測定

ナノ粒子粉体を、滅菌した 50 ml 容ガラス瓶中、1 . 0 mg/

細胞内 ROS レベルの測定は DCFH 法により行った。６ml ウシ血清アルブミン（BSA、ナカライテスク）水溶液中

穴マルチプレートまたはビトリゲル上に培養した HaCaTに 10 mg/ml の 濃 度 と な る よ う に 懸 濁 し、 超 音 波 槽

細胞の培養液をナノ粒子分散液に交換し、６時間および（Bioruptor、コスモバイオ）内で２分超音波処理を行って24 時 間 培 養 し た。 そ の 後 分 散 液 を 除 去 し、10 µM の分散した。その後、10 % FBS 添加 DMEM でマイクロプレ- Dichlorofluorescin diacetate（DCFH-DA） を 含 む
2’, 7’

ー ト 用 は 1 . 0 mg/ml お よ び 0 . 1 mg/ml、 ビ ト リ ゲ ル 用 は

FBS 非添加 DMEM を 1 ml/well 添加、37℃、５％ CO 2 条件

1 mg/ 3 ml となるように希釈した。ビトリゲル上部には下で 30 分インキュベートした。PBS で１回洗浄し、0 . 25 %300 µl（約 100 µg の ZnO となる）
、下部には２ml の分散液

トリプシン処理により細胞を回収した。細胞を PBS で１を投与した。皮膚３次元モデルによる試験では、ナノ粒子回洗浄し、再度細胞を 500 µl の PBS に懸濁し、フローサイ

超音波処理後の分散液を PBS で 10 倍及び 100 倍希釈し、トメーター（ソニー EC 800 セルアナライザー）で蛍光強度

50 µl ずつ皮膚モデル上に添加した。また、粉体としてを測定した。

10 mg のナノ粒子を皮膚モデル上に添加し、37℃で 24 時間

2.6 ヘムオキシゲナーゼ（HO -1）、メタロチオネイン（MT）およびサイトカインの測定

培養した。

2.4

細胞膜損傷の測定

６穴マルチウェルプレートに細胞を 2×105 個 /ml で植え、培養上清への LDH 漏出の測定により、細胞膜損傷を評
表１

37℃で一晩培養しウェル底面に接着させた。培養上清をナ

本研究に用いたナノ粒子の物性− 159 −

コスメトロジー研究報告 Vol.22, 2014

ノ粒子分散液に交換し、24 時間培養した後に上清を回収し3.1.2

酸化ストレスの誘導

Human IL- 6および IL- 8 ELISA Ready- SET- Go! ®（eBioscience）

多くの場合、ナノ粒子の細胞影響には酸化ストレスが関を用いて上清中のIL - 6 および IL - 8 濃度をELISA 法により測与する 5）事から、ナノ粒子投与細胞における細胞内活性酸定した。細胞からは、RNeasy kit（キアゲン）を用いてRNAを素 種（ROS）を 測 定 し た（ 図 2 A）。 投 与 ６ 時 間 の 細 胞 内抽出した。RNAはHigh Capacity cDNA Revers Transcription

ROS レ ベ ル は、100 µg/ml の ZnO お よ び ZnO - S 投 与 群 に®

kit（Applied biosystems）によりcDNAとしたのち、TaqMan

おいて非投与細胞の 1 . 6 ～ 2 倍程度の上昇を示した。TiO 2

Gene Expression Assays（Applied biosystems）を用いたリでも 1 . 2 倍程度の若干の上昇が認められた。SiO 2 投与細胞

アルタイムPCR 法によりHO - 1，MT，IL - 6 および IL - 8 遺伝では、細胞内 ROS レベルの上昇は認められなかった。一方、®

子の発現を解析した。標的遺伝子の TaqMan プローブは投与 24 時間後においては、いずれのナノ粒子でも細胞内Applied biosystems か ら購入した。Assay IDを以下に示す。

ROS レベルの上昇は認められなかった（100 µg/ml の ZnO

MT 1 H : Hs 00823168 _g 1、MT 2 A: Hs 02379661 _g 1、HO-および ZnO-S 投与群では、細胞の損傷が激しく、正確な1 : Hs 01110250 _m 1、IL - 6 : Hs 00985639 _m 1、IL - 8 :測定を行うことができなかった）。さらに、ナノ粒子投与

Hs 00174103 _m 1、IL - 1 b：Hs 01555410 _m 1、IL- 12 B：

細胞におけるヘムオキシゲナーゼ－１（HO - 1）の遺伝子

Hs 01011518 _m 1。

発現レベルを検討した（図 2 B）
。HO - 1 は抗酸化に機能す

３．結
3 .1

る酵素で、その遺伝子発現は ROS 産生などの酸化ストレ

果

スに鋭敏に反応する。なお粒子投与 24 時間後の HO - 1 の発
現レベルは、100 µg/ml の ZnO および ZnO - S 投与群においマルチウェルプレートによる試験

はじめに、マルチウェルプレート上に培養した HaCaTて著しく上昇した。遺伝子発現レベルは ZnO で非投与細細胞を用いて試験を行った。

胞の 64 倍、ZnO - S で 215 倍であった。一方、10 µg/ml の3.1.1

ZnO および ZnO - S 投与群では、それぞれ 1 . 3 および 1 . 2 倍細胞膜損傷

TiO 2、ZnO、SiO 2 ナ ノ 粒 子 を 10 お よ び 100 µg/ml の 濃であった。SiO ではいずれの濃度においても 1 . 2 倍程度の度で培地に分散し、ヒトケラチノサイト HaCaT 細胞に投上昇が認められた。TiO 2 では発現上昇は認められなかっ

与、６時間および 24 時間後に培養上清に漏出した LDH 活

た。ZnO による細胞影響には、溶出した Zn 2 + が関与して性を測定した（図１）。細胞内酵素である LDH の培養上清いるとの報告がある事から、水溶性の ZnCl 2 を投与した細への漏出は、細胞膜の損傷を示唆する。この結果、投与６

胞でも HO - 1 の発現レベルを検討した。この結果、濃度依

時間後では顕著な細胞膜の損傷は認められなかった。投与

存的な HO - 1 遺伝子の発現上昇が認められた。発現レベル

24 時間後では、ZnO および ZnO - S で顕著な細胞膜の損傷

は、Zn 2 + 濃度として 10、30 および 50 µg/ml のとき、それが認められた。細胞内の全 LDH 活性を 100 % としたとき、ぞれ非投与細胞の約 16、46 および 31 倍であった。

24 時間後において TiO 2 投与群（100 µg/ml）の培養上清中

3.1.3

サイトカイン産生の LDH 活性が 3 . 0 % であったのに対し、ZnO 投与群ではナノ粒子投与細胞について、IL - 1 b、IL- 8 および IL- 12

75 . 2 %、ZnO - S 投 与 群 で は 85 . 3 % で あ っ た。 ま た、SiO 2の遺伝子発現を検討した。IL- 1 b 遺伝子の発現は、TiO 2 ,では 21 . 9 % であった。

ZnO お よ び SiO 2 を 投 与 し た 細 胞 で 有 意 に 増 加 し た（ 図

図１ ナノ粒子の細胞膜に対する影響
各ナノ粒子を 10 および 100µg/ml の濃度で HaCaT 細胞に投与し、24 時間後に培養上清中の LDH 活性を測定した。*p< 0.05,**p< 0.01（vs 非投与細胞 , ANOVA, Dunnett）− 160 −

化粧品向けナノ粒子の安全性評価を目的とした in vitro スクリーニングシステムの構築―物理・化学的性状と安全性との関連―

3 A）。IL- 8 遺 伝 子 の 発 現 は、100 µg/ml の ZnO お よ び

ZnO ナノ粒子で強い細胞毒性が認められたことから、分ZnO - S を投与した細胞でそれぞれ非投与細胞の 3 . 6 および

散液中の Zn 2 + 濃度を測定した。その結果、細胞への投与

4 . 8 倍上昇した。TiO 2 および SiO 2 では IL- 8 遺伝子の発現

24 時間後の培養上清中で Zn 2 + の溶出が認められた。ZnO

上昇は見られなかった。IL - 12 の発現上昇はいずれのナノおよび ZnO - S について、培養上清中の Zn 2 + 濃度は、ZnO粒子の投与によっても上昇しなかった。ZnCl 2 の投与では、10 µg/ml：3 . 5 µg/ml、ZnO 100 µg/ml：2 . 6 µg/ml、Zn 2 + が 10 µg/ml の濃度背 IL - 1 b、IL - 8、IL - 12 すべての遺ZnO - S 10 µg/ml：11 . 1 µg/ml、ZnO - S 100 µg/ml：7 . 2

2+

伝子発現が上昇した。これらの遺伝子発現に Zn 濃度依µg/ml であった。さらに、ナノ粒子投与細胞において、存性は見られなかった。さらに、ELISA 法により培養上

Cu や Cd，Zn などの金属イオンに応答し、金属毒性と酸

清中の IL - 8 および IL - 1 b タンパク質の濃度を測定したと化ストレスに働くメタロチオネイン 1（MT 1）遺伝子の発ころ、ZnO および ZnO - S の投与により有意に上昇した（図現を検討した（図 4 B）。この結果、ZnO および ZnO - S 投与3 B）。また、上清中の IL - 1 b の濃度はいずれの投与群にお細胞において有意な MT 1 の発現上昇を認めた。これらのいても検出限界近くであり、ほとんど検出することができ

結果は、ZnO および ZnO - S による細胞影響が、Zn 2 + の溶なかった。

出による可能性を示した。

3.1.4

亜鉛イオンの溶出

ZnO ナノ粒子の細胞影響には、ZnO ナノ粒子から溶出
2+

6）

3.2

ビトリゲル

した Zn が関与していることが知られている 。ZnO お

試験に供したナノ粒子のうち ZnO で強い細胞影響が認

よび ZnO - S について、蒸留水および本研究で用いた２種

められたこと、また溶出した Zn 2 + が細胞影響に関与して類の培地中での Zn 2 + の溶出を検討した。37℃で６時間保いることが示唆されたこから、さらに ZnO ナノ粒子から2+持した後、液中に溶出した Zn 濃度を測定したところ、
2+

液中の Zn 濃度は分散媒により著しく異なった（図 4 A）。
2+

蒸留水中よりも、培地中でより多くの Zn が溶出した。

溶出した Zn 2 + が結合組織に浸透することによる影響を検討した。結合組織のモデルとしてコラーゲンビトリゲルを用いた。ビトリゲル上に HaCaT 細胞を培養し、ビトリゲ

図２ ナノ粒子の細胞内酸化ストレスに対する影響（A）細胞内 ROS レベル。（B）HO-1 遺伝子発現。各ナノ粒子を 10 および 100µg/ml の濃度でHaCaT 細胞に投与し、６時間または 24 時間後に細胞内 ROS および HO-1 遺伝子発現を測定した。10, 30, 50µg/ml の Zn2+ を含む ZnCl2 溶液でも同様の試験を行った。値は非投与細胞を 1としたときの相対値として示した。**p<0.01（vs 非投与細胞 , ANOVA, Dunnett）− 161 −

コスメトロジー研究報告 Vol.22, 2014

図３ ナノ粒子のサイトカイン遺伝子発現に対する影響（A）サイトカイン遺伝子発現。
（B）培養上清中IL-8 タンパク質濃度。各ナノ粒子を 10 および100µg/ml の 濃 度 で HaCaT 細 胞 に 投 与 し た。
24 時間後に遺伝子発現及びタンパク質濃度を測定 し た。**p< 0.01（vs 非 投 与 細 胞 , ANOVA,
Dunnett）

図４ ナノ粒子の細胞影響における亜鉛イオンの影響（A）酸化亜鉛ナノ粒子からの Zn2+ の溶出。ZnO および ZnO-S をそれぞれ
1.0 および 10mg/ml の濃度で蒸留水（DW）、DMEM（FBS を含まない）、
10% FBS 添 加 DMEM お よ び EPI100-NMM-SIT 培 地 中 に 分 散 し、37℃で６時間保持した後、液中に溶出した Zn2+ 濃度を測定した。
（B）ナ
ノ粒子のメタロチオネイン遺伝子発現。各ナノ粒子を 10 および 100µg/
ml の濃度で HaCaT 細胞に投与した。
24 時間後に遺伝子発現及びタンパク質濃度を測定した。値は非投与細胞を 1 としたときの相対値として示した。*p< 0.05, **p< 0.01（vs 非投与
細胞 , ANOVA, Dunnett）− 162 −

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ルの上部あるいは下部に ZnO 分散液を投与し、HaCaT 細胞

4 . 7 倍 増 加 し た（ 図 9 A）
。HO - 1 遺 伝 子 の 発 現 は ZnO/に与える影響を検討した。投与の概要と略称を図５に示す。

DMEM では非投与細胞に対し 1 . 6 倍上昇したが有意差は

3 . 2 .1

認められなかった（図 9 B）。DMEM/ZnO では非投与細胞

亜鉛イオンの溶出投与時の ZnO 分散液（ZnO 濃度１mg/ ３ml）中の Zn2+

濃度は、9 . 0 µg/ml であった。ZnO/DMEM におけるビトに対し 85 倍上昇した。
3.2.4

サイトカイン

リゲル上部及び下部の Zn 2 + 濃度は、それぞれ 4 . 1 µg/ml お

ZnO/DMEM および DMEM/ZnO 双方で培地中への IL- 8

よび 2 . 9 µg/ml であった。DMEM/ZnO では、ビトリゲルの分泌が認められた（図 10）。さらに、DMEM/ZnO では

2+

上部及び下部の Zn 濃度は、それぞれ 9 . 5 µg/ml およびIL - 6 の分泌も認められた。これらのサイトカインについて、

7 . 6 µg/ml であった（図６）。分散液投与 24 時間後の細胞内のメタロチオネイン遺伝子の発現は、MT 1 A、MT 2 A ともに ZnO/DMEM および DMEM/ZnO 双方で非投与細胞の約３～６および 10 倍に増加した（図７）
。
3.2.2

細胞膜損傷

ZnO/DMEM では培地への LDH 漏出は若干の増加傾向にあったが、有意差は認められなかった。DMEM/ZnO では、培地中への LDH 漏出は有意に上昇した（図８）。
3.2.3

酸化ストレスZnO 投与細胞の細胞内 ROS レベルは、24 時間後で非投与細胞に対し ZnO/DMEM で約 1 . 5 倍、DMEM/ZnO で約

図５ ビトリゲルを用いた ZnO ナノ粒子の投与実験の概要

図６ ZnO ナノ粒子を投与したビトリゲルにお2+ける Zn 濃度図７ ナノ粒子のメタロチオネイン遺伝子発現に対する影響（ビトリゲル）
投与 24 時間後に測定。*p< 0 . 05 , **p< 0 . 01（vs 非投与細胞 ,ANOVA, Dunnett）− 163 −

コスメトロジー研究報告 Vol.22, 2014

遺伝子発現を検討したところ、いずれも DMEM/ZnO で発４．考現の上昇が認められた。ZnO/DMEM では発現の上昇は見ら れ な か っ た。 ま た、DMEM/ZnO で は IL- 1 b お よ び
IL - 12 遺伝子発現が有意に上昇した。

察

本研究では、ナノ粒子のうち化粧品材料としてよく利用される TiO 2、ZnO および SiO 2 の細胞及び皮膚モデルに対する影響を検討した。これらのナノ粒子のうち、ZnO ナ

3.3

皮膚３次元モデルノ粒子で強い細胞影響が認められた。一方で、TiO 2 およビトリゲルによる検討で、ZnO ナノ粒子から溶出したび SiO 2 の細胞影響は小さかった。ZnO を含むいくつかの金

2+

Zn が結合組織に浸透して下部の細胞に影響する事が示属酸化物ナノ粒子については、これまでに細胞影響が報告唆された。そこでさらにより実際に皮膚に近い３次元モデされている 4）。これら細胞影響を示す金属ナノ粒子の最もルを用いて検討を行った。対照として、溶解性を示さない

重要な影響因子として、金属イオンの溶出が挙げられる 5）。

TiO 2 でも試験を行った。

従来不溶性として分類されていた物質でも、ナノ粒子では3.3.1

大きな溶解性を示す事がある。例えば、酸化ニッケル（NiO）

亜鉛イオンの溶出皮膚モデル上に投与した ZnO 分散液中の Zn 2 + 濃度は、は水に不溶とされているが、一部の NiO ナノ粒子は培地中

ZnO 濃度が 0 . 1 および 1 . 0 mg/ml のとき、それぞれ 1 . 0 おで高い溶解性を示した 1）。ZnO ナノ粒子も培地中に Zn 2 +よび 0 . 8 µg/ml であった。培養液中の亜鉛イオンを測定しを溶出し、細胞に強い酸化ストレスを引き起こすことで細2+たところ、ZnO 粉体を投与したものを除き、Zn は検出

胞死をもたらす 4）。また、ラットに ZnO ナノ粒子を気管内されなかった。ZnO 粉体を投与したモデルでは、培養液注入した実験では、肺に酸化ストレスと炎症を引き起こし2+

中に 4 . 9 µg/ml の Zn が含まれていた。メタロチオネイン

たが、このとき、Zn 2 + の溶出が重要であることが示唆さ

遺伝子発現を測定したところ、ZnO 分散液投与によって発現が上昇した（図 11）
。
3.3.2

細胞影響

ZnO および TiO 2 分散液／粉体を皮膚３次元モデルに投与し、24 時間後に培養液中の LDH 活性を測定した。ZnO
および TiO 2 投与による培地中への LDH の漏出は認められなかった。酸化ストレス応答タンパク質 HO - 1 遺伝子発現は、1 . 0 mg/ml の ZnO 分散液の投与によって非投与モデルに対し 1 . 6 倍程度上昇した（図 12 A）。ZnO および TiO 2 ナ
ノ粒子の投与により、24 時間後の時点でのサイトカイン（IL- 1 b、IL- 8、IL- 12）遺伝子発現の上昇は認められなかった（図 12 B）。一方で、ZnO 粉体の投与により、24 時間
後の培地中の IL- 8 タンパク質濃度は有意に上昇した。また、ZnO および TiO 2 粉体を投与し、24 時間後の培地中のIL- 6 濃度も有意に上昇した（図 12 C）。

図８ ZnO ナノ粒子の細胞膜に対する影響（ビトリゲル）投与24時間後に測定。**p< 0.01（vs 非投与細胞, ANOVA, Dunnett）

図９ ZnO ナノ粒子の細胞内酸化ストレスに対する影響（ビトリゲル）（A）細胞内 ROS レベル。
（B）HO- 1 遺伝子発現。投与 24 時間後に測定。値は非投与細胞を 1 としたときの相対値として示した。**p< 0 . 01（vs 非投与細胞 , ANOVA, Dunnett）− 164 −

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図 10 ZnO ナノ粒子のサイトカイン発現に対する影響（ビトリゲル）
培養上清中サイトカインタンパク質濃度およびサイトカイン遺伝子発現。各ナノ粒子を 10 および 100 µg/
ml の濃度で HaCaT 細胞に 24 時間投与した。*p< 0 . 05 , **p< 0 . 01（vs 非投与細胞 , ANOVA, Dunnett）

図 11 ナノ粒子のメタロチオネイン遺伝子発現に対する影響（皮膚３次元モデル）
投与 24 時間後に測定。**p< 0 . 01（vs 非投与モデル , ANOVA, Dunnett）− 165 −

コスメトロジー研究報告 Vol.22, 2014

れている 3）。TiO 2 ナノ粒子の分散液をラット皮膚に塗布し、ZnO、SiO 2 ナノ粒子が粒子の状態で何層にも重なった細胞

皮下へのナノ粒子の移行を検討したところ、粒子は表皮を間を通過し、真皮にまで到達することはきわめて考えにく

通過せず、皮下への移行は認められなかった 6）。ナノ粒子

い。しかし一方で、ZnO から溶出した Zn 2 + が表皮に浸透し、は凝集体を形成しやすく、通常分散液中で数十～数百 nm

真皮に到達する可能性は否定できない。本研究で、ビトリの二次粒子を形成しており、一次粒子が単独で存在するこゲルを用いた実験により、ビトリゲルによって隔てられ、とはきわめてまれである。化粧品に使用される TiO 2 や

ZnO ナノ粒子と直接の接触がない HaCaT 細胞で、細胞内図 12 ZnO ナノ粒子の HO- 1 およびサイトカイン発現に対する影響（皮膚３次元モデル）
投与 24 時間後に測定。**p< 0 . 01（vs 非投与モデル , ANOVA, Dunnett）− 166 −

化粧品向けナノ粒子の安全性評価を目的とした in vitro スクリーニングシステムの構築―物理・化学的性状と安全性との関連―

ROS の上昇と、メタロチオネインおよび IL- 8 遺伝子の発現上昇が認められた。また、メタロチオネイン遺伝子の発現上昇とサイトカインの誘導は、ZnO ナノ粒子を投与した皮膚３次元モデルでも認められた。メタロチオネインはZn 2 + を含む金属の存在によって発現が誘導される。B 細胞の分化誘導因子である IL - 6 は液性免疫に関わり、IL- 8 は
好中球の走化性活性を示す代表的な炎症メディエーターである。また、IL - 12 はナイーブ T 細胞の Th 1 方向への分化に関与するが、Zn 2 + による発現の上昇が認められた。こ
れらの結果は、ZnO ナノ粒子では分散液の塗布による粒
子自体の皮膚への侵入はないものの、溶出した Zn 2 + が真皮にまで浸透し、上皮細胞に対して炎症誘発や酸化ストレスの誘導、アレルギー反応の惹起が生じる可能性を示唆する（図 13）。本研究ではケラチノサイトである HaCaT 細胞
および皮膚３次元モデル（ヒト正常表皮角化細胞により構成される）を使用したが、金属酸化物ナノ粒子から溶出した金属イオンはランゲルハンス細胞を刺激し、アレルギー性皮膚炎を引き起こす可能性もある。ZnO などの金属酸
化物ナノ粒子からの金属の溶出は、分散媒により異なり、また皮膚への浸透の化学的な定量は困難である。メタロチ
2+

オネインは Zn を含む金属イオンにより誘導され、本研究においても Zn 2 + の溶出に対し鋭敏な発現上昇を示した。
また、影響が小さかった不溶性の TiO 2 ナノ粒子の投与で

図 13 ナノ粒子の皮膚に対する影響の概要
化粧品へのナノ粒子の利用において、ZnO ナノ粒子のように溶解性を示すナノ粒子では、溶解した金属イオンが皮膚に浸透して、サイトカイン遺伝子の発現を誘導することで炎症などを引き起こす可能性がある。

は発現の上昇は認められなかった。ナノ粒子の毒性に金属
イオンの溶出は密接に関連しており、これらの結果から、

small. Diam. Relat. Mater., 24 , 15 – 24 , 2012 .

メタロチオネイン遺伝子の発現解析は、皮膚における金属

３）Fukui H, Horie M, Endoh S, Kato H, Fujita K,

酸化物ナノ粒子毒性を考慮する上で有効なマーカーとなり

Nishio K, Komaba LK, Maru J, Miyauhi A, Nakamura

得る。ビトリゲルと皮膚上皮細胞を組み合わせ、メタロチ

A, Kinugasa S, Yoshida Y, Hagihara Y, Iwahashi

オネインの遺伝子発現を解析することで、有害な可能性の

H,: Association of zinc ion release and oxidative

あるナノ粒子を選別することが可能であろう。今後の課題

stress induced by intratracheal instillation of ZnOとして、アイソザイムが存在するメタロチオネインの発現

nanoparticles to rat lung. Chem. Biol. Interact., 198 , 29 -プロファイルを確立し検出精度を高めること、また溶出し37 , 2012 .

た金属イオンに対するランゲルハンス細胞の応答を検討す
ることが重要である。

４）Horie M, Fujita K, Kato H, Endoh S, Nishio K,
Komaba LK, Nakamura A, Miyauchi A, Kinugasa
S, Hagihara Y, Niki E, Yoshida Y, Iwahashi H,:（引用文献）

Association of the physical and chemical properties

１）Horie M, Nishio K, Fujita K, Kato H, Nakamura

and the cytotoxicity of metal oxide nanoparticles: metal

A, Kinugasa S, Endoh S, Miyauchi A, Yamamoto K,

ion release, adsorption ability and specific surface area.

Murayama H, Niki E, Iwahashi H, Yoshida Y, Nakanishi

Metallomics., 4 , 350 - 360 , 2012 .

J.: Ultrafine NiO particles induce cytotoxicity in vitro５）Horie M, Kato H, Fujita K, Endoh S, Iwahashi H.,:by cellular uptake and subsequent Ni(II) release. Chem

In vitro evaluation of cellular response induced by

Res Toxicol., 22 , 1415 - 1426 , 2009 .

manufactured nanoparticles. Chem. Res. Toxicol., 25 ,２）H o r i e M , K o m a b L K , K a t o H , N a k a m u r a A ,605 - 619 , 2012 .

Yamamoto K, Endoh S, Fujita K, Kinugasa S, Mizuno

６）Adachi K, Yamada N, Yamamoto K, Yoshida Y,

K, Hagihara Y, Yoshida Y, Iwahashi H,: Evaluation

Yamamoto O.,: In vivo effect of industrial titaniumof cellular influences induced by stable nanodiamonddioxide nanoparticles experimentally exposed todispersion; thehairless rat skin. Nanotoxicology., 4 , 296 - 306 , 2010 .

cellular influences of nanodiamond are− 167 −