Agilent 2100 バイオアナライザをより良くお使いいただくために〜 DNA・RNA・Protein 〜■ バイオアナライザ豆知識■ 便利な機能のご紹介■ よく報告されるトラブル・ご質問

アジレント・テクノロジー株式会社
バイオアプリケーショングループ

Agilent 2100 Bioanalyzer

Contents
バイオアナライザ 豆知識

よく報告されるトラブル・ご質問

・泳動原理 ..................................... 3

実験操作編

・Kit の種類 ................................... 5・トラブルシューティング ...... 27

・Expert Software のバージョンの違い ..................... 6・チップ調製時 ........................... 30

・サイズの算出方法 .................... 7・濃度の算出方法......................... 8・RIN の計算フロー ................... 14・RNA Assay の選択 .................. 16

・電極のメンテナンス .............. 33

Expert 編

・ピークが認識されない .......... 34

・様々な RIN ............................... 17・バンド・ピークがずれる ...... 35

便利な機能のご紹介

・rRNA ピークを編集したい ... 37

・スメアアッセイ....................... 18
・ピークの編集 ........................... 22
・electropherogram の重ねがき ................................... 23

・Comparison 機能 ..................... 24
・データ出力 ............................... 25

2・サンプル調製時....................... 28

・RIN が表示されない ............... 36
・サイズ表示にならない .......... 38
・故障かな…と思ったら .......... 40
・Short Circuit Test ..................... 41
・修理・点検 ............................... 42
・サポートサイトのご案内 ...... 43

バイオアナライザ

豆知識

泳動原理
バイオアナライザでは 16 本の電極全てを使用して電界をかけます。
ロードされたサンプルの一部が分離チャンネルに injection されます。
サンプル用ウェル *

ゲル用
ウェル *
分離チャネルラダ用ウェル *step 1

サンプルのロード

step 2step 3

分離チャネルへ注入

分離、検出* ゲル用、ラダ用、サンプル用ウェルの位置は Kit により異なります。

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3Agilent 2100 Bioanalyzer

バイオアナライザ

豆知識

泳動原理 〜 高感度 Assay 〜
高感度 Assay（High Sensitivity DNA Kit, RNA Pico Assay）では流路内でサンプルをスタッキングをすることにより高感度化を実現しています。

サンプルのスタッキングによる高感度化
導電率 小＝電流 小＝抵抗 大

導電率 大＝電流 大＝抵抗 小緩衝液

試料ゾーンに大電圧

緩衝液
スタッキング＝濃縮
試料ゾーン＝試料ウェルの緩衝液&試料
緩衝液＝Chip Capillary内のgel/dye

注）サンプル中の塩濃度が高いとスタッキングがうまく行えず、泳動に影響が出ます（p28 参照）。
注）高感度 Kit と通常感度（DNA HighSensitivity と DNA1000/7500/12000、RNA Nano と Pico）の電極 * は別にご用意いただくことをお勧めしております。
併用する場合は、使用前に必ず電極をとりはずし洗浄してください。
*** 16pin 電極カートリッジ（型番 : 5065-4413）** 実際の操作は以下の FAQ の資料をご参照ください。

https://www.chem-agilent.com/lsca-booth/BIO_FAQ/index3-Bio.htm#bio01（ログイン名、Password はお問い合わせください）4

バイオアナライザ

豆知識

Kit の種類
泳動したいサンプルのサイズ、濃度に応じて適宜選択してください。
ソフトウェアのバージョンによって使用できる Kit が異なります（p6 参照）。

DNA
Kit

Size

Conc.

DNA1000

25-1000 bp

0.1-50 ng/µL*1

DNA7500

100-7500 bp

0.5-50 ng/µL*1

DNA12000

100-12000 bp

0.5-50 ng/µL*1

50-7000 bp

5-500 pg/µL*1

High Sensitivity DNA*1：ラダをサンプルとした場合

RNA
Kit

RNA Nano

Size

Conc.

－

5-500 ng/µL

RNA Pico－

50-5000 pg/µL

Small RNA

6-150 nt

1-100 ng/µL*2*2：total RNA をサンプルとした場合Protein
Kit

Size

Conc.

Protein80

5-80 kDa

6-4000 ng/µL*3

Protein230

14-230 kDa

6-5000 ng/µL*3

High Sensitivity Protein 250

10-250 kDa

1-3000 ng/µL*4*3：CAII をサンプルとした場合*4：ラベル化に必要な量。より濃度の低いサンプルをラベル化するプロトコルもございます。

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バイオアナライザ

豆知識

Expert software のバージョンの違い
ソフトウェアのバージョンによって使用できる Kit、Assay が異なります。
注）バージョンにより必要な PC スペックが異なります。詳細はお問い合わせください。

RIN を計算したい
Ver. 02.03 以上でご覧いただけます
ただし以前の ver で取得したデータを別 PC で解析することが可能

Small RNA Kit を使いたい
Ver. 02.05 以上でご使用いただけますHigh Sensitivity Protein250 Kit を使いたい
Ver. 02.06 以上でご使用いただけますHigh Sensitivity DNA Kit を使いたい
Ver. 02.07 以上でご使用いただけます

Windows7 を使いたい
Ver. 02.08 以上でご使用いただけます
注）Expert ソフトウェアは下位互換性がありません。
新しいバージョンで得たデータは、より古いバージョンでは見ることはできません。

6

バイオアナライザ

豆知識

サイズの算出方法例）DNA7500 assay

LadderStandard Curve
Size

Time（Seconds）① ラダは既知のサイズなのでソフトウェアにはあらかじめピークサイズがインプット
されています。
② ラダレーンのピークの Migration time をもとに、Standard Curve を描きます。
③ それぞれのピークの Migration time から Standard Curve をもとにサイズを算出します。
Ladder size は Assay Property から、Standard Curve は Chip Summary から確認可能

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バイオアナライザ

豆知識

濃度の算出方法 〜 DNA Assay 〜
注） 濃度の算出方法は Assay によって異なります
正しい定量値を得るためにはそれぞれの定量で使用されるMarker や Ladder が正しく泳動・認識される必要があります。

Upper Marker
Upper Marker

Overlaid Samples① Marker に入っている Upper Marker は既知濃度です。
② 各レーンの Upper Marker のエリアを基準にインジェクション量の補正を行います。
③ 各ピークがもつサイズをもとに、correction factor をかけます。
correction factor: Agilent がもつ経験的な値、インジェクション時のサイズによるバイアスを補正します。
④ サイズに応じてモル濃度計算をおこないます。

Peak Conc.
=（The Area）（* UpperMarker known conc./UpperMarker Area）* injection bias factor）（

8バイオアナライザ

豆知識

濃度の算出方法 〜 RNA（Nano/Pico）Assay 〜
Laddersample① Ladder に入っている RNA は既知濃度です。

Nano：150 ng/µL
Pico：1000 pg/µL② Ladder のエリアを基準に濃度を算出します。

Ladder Area：Ladder Conc.=Sample Area：Sample Conc.

Nano

RNA Conc.（ng/uL）=（The Area）*（Ladder Area）/（150* Sample Area）
Pico

RNA Conc.（pg/uL）=（The Area）*（Ladder Area）/（1000* Sample Area）

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バイオアナライザ

豆知識

濃度の算出方法 〜 Small RNA Assay 〜
LaddersampleLower Marker① Ladder に入っている各ピークは既知濃度です。
② Ladder の各ピークのエリアを基準にサイズごとの補正値を計算します。
③ 各レーンの Lower Marker は既知濃度（500 pg/µL）です。
④ ②と③で求めた factor で miRNA、small RNA と想定される領域の濃度を計算します。

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バイオアナライザ

豆知識

濃度の算出方法 〜 Protein80 & 230 Assay 〜

Upper Marker① 各レーンの Upper Marker のエリアを基準にインジェクション量の補正を行います。Protein 80、230Kit では Upper Marker を使います。
② 各ピークの補正値をかけます。
Peak Conc. =（The Area）*（Marker known conc./Marker Area）* ただし、ラベル化効率はタンパク質の種類によって異なります。（p13 参照）

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バイオアナライザ

豆知識

濃度の算出方法 〜 High Sensitivity Protein250 Assay 〜
LaddersampleLadder の Time Corrected Area (TCA)* と濃度 (4,167 pg/µL**) をもとに Sample の TCAから算出します。

* 移動速度による影響を補正した面積値** 通常プロトコルで調製時の Sample Buffer と混合するときの ladder 濃度（ladder のもとの濃度 = 1 mg/mL）

Peak conc. =（sample TCA）*（Ladder Conc.）/（Ladder TCA）

12

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豆知識

濃度の算出方法 〜 Protein Assay 〜
ラベル化効率はタンパク質により異なります。
Upper Marker や Ladder のみで補正する（p11、12）他、標品による濃度補正も可能です。

① 10 ウェルのうち、何ウェルかに濃度をふった標品、残りにサンプルを入れて測定します。
② データファイルを開き、Chip Summary に標品の情報を入力します。
③ ソフトウェアが標品のメインピークをもとに Standard Curve をかきます。
④ ③をもとに濃度を補正し算出します。

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13Agilent 2100 Bioanalyzer

バイオアナライザ

豆知識

RIN 計算のフロー① Human、Mouse、Rat の典型的な total RNA のデータをもとにしたアルゴリズムを使用して計算されます。

①

エレクトロフェログラムの region 分けをおこないます。

② 異常データの検出をおこないます。
Human、Mouse、Rat の典型的な total RNA のデータをもとに①で設定した region に 対し Anomaly Threshold を設定しています（p15 参照）。
③ RIN の計算を行います。
参照論文 : http://www.biomedcentral.com/1471-2199/7/3

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バイオアナライザ

豆知識

RIN の計算フロー 〜 フラグ 〜
典型的な total RNA の泳動パターンと異なる場合、Error が表示されフラグがたちます。

Critical な項目

RIN が表示されません（N/A と表示）。* フラグは●で表示されます。
表示される Error

異常と判断された箇所
ベースライン

Unexpected baseline signal

5S 領域

Unexpected signal in 5S-region

低分子領域

Unexpected signal in fast-region

18S/28S 間領域

Unexpected signal in inter-region

rRNA ratio

Unexpected ribosomal ratio

サンプルタイプ（rRNA 位置）

Unexpected sample type

Critical でない項目

RIN は表示されます。 フラグは●で表示されます。
表示される Error

異常と判断された箇所

Lower Marker より低分子領域

Unexpected signal in pre-region

前駆物質領域Unexpected signal in precursor-region

高分子領域

Unexpected signal in post-region

Lower Marker

Unexpected lower marker* フラグを解除すると RIN が表示されます（p36 参照）

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バイオアナライザ

豆知識

RNA Assay の選択
目的に応じて適切な Assay を泳動前に選択してください。
注）泳動後、データを解析しなおすことはできません。

真核生物の total RNA を解析したい
Eukaryote total RNA Nano/Pico Series II

rRNA の位置は 18S、28S で設定されています。

原核生物の total RNA を解析したい
Prokaryote total RNA Nano/Pico Series II

rRNA の位置は 16S、23S で設定されています。
生物種により、非分解の RNA でも RIN が 10 にならない場合があり。
ます（p17 参照）

植物の total RNA を解析したい
Plant total RNA Nano/Pico Series II

rRNA の位置は 18S、25S で設定されています。
複数の rRNA がある組織の場合、非分解の RNA でも RIN が 10 にならない場合があります（p17 参照）。

mRNA や増幅した cRNA を解析したい
mRNA Nano/Pico Series II

total RNA の解析より泳動時間が長く、より長い RNA を検出できます。
rRNA の混入率が計算されます。
RIN は計算されません。
16

バイオアナライザ

豆知識

様々な RIN
Human、Mouse、Rat の total RNA 以外の場合、非分解の RNA でも RIN が10 にならない場合があります。
RIN 7.2

RIN 6.5

Arabidopsis leaves

Tomato leaves

RIN が参考にできない生物種の場合、rRNA のピークとそれ以外の領域のシグナル、特に低分子領域のシグナルをチェックしてください。
25
20
15
10

24

29

34

19

24

29

34

19

24

29

34

39

44

28S

19

18S

0

3-28S

2-18S

5
1

Fluorescence

checkpoint1
rRNA のピーク

49

Time（seconds）

54

59

12.5

Fluorescence

checkpoint2
rRNA のピーク間

10.0
7.5
5.0
2.5

checkpoint3

低分子領域

分解

Fluorescence

0.0
39

44

49

54

59

64

69

39

44

49

54

59

64

69

Time（seconds）

35
30
25
20
15
10
5
0

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Time（seconds）

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Agilent 2100 Bioanalyzer

便利な機能のご紹介

スメアアッセイ 〜 DNA Assay 〜
任意のピークの特徴を数値化できます。
示される値
• 範囲
• 割合
• 濃度
• 平均サイズ など① Region Table を選択します（DNA のみ、その他は次頁参照）。
② 画面上で右クリック、“Add Region”を選択します。
（High Sensitivity DNA Assay の場合は、Default で Region が表示されます。）③ 現れた縦線を数値化したいピークに合わせます。

3
2

1

18

便利な機能のご紹介

スメアアッセイ 〜 DNA Assay 以外 〜DNA assay 以外の場合、スメアアッセイはデフォルト設定ではありません。
（Region Table タブがありません。
）① Setpoint Explorer を表示します。
② プルダウンから“Advanced”を選択します。
③“Smear Analysis”の“Perform Smear Analysis”を ON にします。
④ Region Table が表示されます。以後の手順は前頁を参照。

2

3

1

4

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19Agilent 2100 Bioanalyzer

便利な機能のご紹介

スメアアッセイ
全てのサンプルを同じ Region で設定したい場合① Setpoint Explorer を表示します。
②“Global”タブを選択し、プルダウンから“Advanced”を選択します。
③“Smear Analysis”の“Regions”横の“Table”をダブルクリックします。
④“Smear Regions（Global Setpoints）”の“From”“To”に任意の数字を入力します。

2

4
3

1

20

便利な機能のご紹介

スメアアッセイ

注意点① Region Table のベースラインは
ベースラインで区切られたエリア内② ベースラインの始点・終点はで示されます。
の定量値が表示されます。

により調整できます。

○ 正しいベースライン

2
1

× 正しくないベースライン

2

1

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21Agilent 2100 Bioanalyzer

便利な機能のご紹介

ピークの編集認識されてないピークを認識させたい、ベースラインを編集したい場合、
Manual Integration 機能を使用します。
注）

RNA ではこの機能は使用できません。
rRNA ピークの編集は p37 をご参照ください。

① Electropherogram 上で右クリックし、“Manual Integration”を選択。
② ベースラインが表示されます。

③ ピークを追加・削除する場合は、右クリックで“Add/Remove Peak”
を選択してください。
④ ベースラインを編集する場合は、 をドラッグします。
Ctrl キーを押しながらドラッグすると縦方向に動かせます。

1

4

3

2
22

便利な機能のご紹介

electropherogram の重ねがき
同一チップ内の electropherogram を簡単に重ねがきできます。
① Ctrl キーを押しながら gel image または Sample 名をクリックします。
②“Overlay Samples”から選択することもできます。

2
1

www.agilent.com/chem/jp23Agilent 2100 Bioanalyzer

便利な機能のご紹介

Comparison 機能
異なるチップからのデータを選択抽出して、ひとつのファイルに統合できます（同じアッセイのみ、最大 48 データまで）。
注）サイズ表示はできません（p.38 参照）① Contexts から“Comparison”を選択します。
② ファイル（複数選択可）を開きます。
開いたデータは Select Data File にリストされます。
③ 比較したいデータを選択し、右クリックし“Add Sample to New Comparison File”
を選択します。
④ 次のデータからは“Add Sample to Comparison File”を選択します。
⑤ 新しく Comparison ファイル（拡張子 : xac）が作成されます。

2

4

1
3

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便利な機能のご紹介

データ出力
Copy & paste
出力したいデータ上で右クリックをし、データをコピーすることができます。
electropherogram

Gel imagePeak table

Export① File メニューから“Export”を選択します。

様々な形式で出力できます。

③ シグナルデータ を csv 形式で、
gel image・electropherogram を BMP、JPEG、TIFF
形式で出力できます。

② 出力したいデータと形式を選択します。

3

1
2

www.agilent.com/chem/jp25Agilent 2100 Bioanalyzer

便利な機能のご紹介

データ出力
PDF Export
データを report 形式で出力できます。
① File メニューから“Print”を選択します。
② 出力したデータを選択し、PDF にチェックをいれ保存します。

12注）日本語 OS の場合、PDF が作成されない場合があります。

26

よく報告されるトラブル・ご質問

トラブルシューティング
エラーがおきた

データがおかしい原因✓ サンプル

高濃度
高分子等の混入✓ チップ調製

gel-dye mix
gel 充填圧

気泡の混入✓ ソフトウェア

ピーク認識
marker の誤認識

✓ ハードウェア

電極のメンテナンス
故障

www.agilent.com/chem/jp27Agilent 2100 Bioanalyzer

よく報告されるトラブル・ご質問（実験操作編）

サンプル調製時
注）問題があるのが 1 サンプルだけの場合でも、Ladder や他のサンプルのデータに影響が出る可能性があります。

✓ サンプル濃度は Kit スペック範囲内ですか？

✓ サンプルに高分子等が混入していませんか？
genomic DNA のような高分子
AMPure beads のような精製時のコンタミネーション✓ サンプルの溶媒は Kit スペック範囲内ですか？
HighSensitivity DNA Kit, RNA Pico → 塩濃度に注意
HighSensitivity DNA Kit → 1x TE を使用

流路が詰まったり、電場が不安定になります。

泳動遅延がおきたり、ベースラインが不安定になります。

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よく報告されるトラブル・ご質問（ 実験操作編）

サンプル調製時 〜 ゲノムの混入例（RNA）〜
100-300 bp のゲノム混入例
rRNA のピークに分解がみられないも関わらず、低分子側にシグナルが観察されます。

高分子（>20k bp）のゲノム混入例
高濃度で混入している場合、分離チャネルに injection はされないものの流路を塞ぎ電界に影響を与えます。

www.agilent.com/chem/jp29

Agilent 2100 Bioanalyzer

よく報告されるトラブル・ご質問（実験操作編）

チップ調製時Gel-dye mix 調製 & ゲル充填時*Kit によって異なります
プロトコルを確認してください。

試薬は室温に戻っていますか？
室温が低い部屋でのチップ調製は避けてください✓ ゲルと色素の量 * は正しいですか？
✓ フィルタ遠心の条件 * は正しいですか？
✓ ストッパーの位置 * は合っていますか？
✓ 充填時間 * は合っていますか？
✓ 加圧部にほこり、詰まり、亀裂等はありませんか？ **✓ シリンジがメタルクリップにきちんとはまっていますか？ **流路内にゲルが適切に充填されない、色素の過不足によるシグナル低下、電場が不安定になります。

泳動遅延やベースラインが不安定になったり、ノイズが発生します。

** メンテナンス方法等は以下の FAQ の資料をご参照ください。
https://www.chem-agilent.com/lsca-booth/BIO_FAQ/index3-Bio.htm#bio01（ログイン名、Password はお問い合わせください）30

よく報告されるトラブル・ご質問（ 実験操作編）

チップ調製時Gel、Buffer、Sample のアプライ✓ 気泡が入らないよう注意してください。
ゲルは粘性が高いので特に注意してください。インバースピペッティングでアプライすることをお勧めします。

インバースピペッティングとは…
第 1 ストップから少し押した状態で液を吸い上げ、液を出す際には第 1 ストップで止める方法です。

チップの先をウェルの底につけ、ゆっくり液を出します。
気泡が入った場合は取り除いてください。

電流が適切に流れないので、泳動が開始されません。
気泡

液量不足
気泡

ウェル内

気泡

流路内

チップが認識されず泳動がスタートできない、 IV Limit Error Run aborted Error が出て分析がストップします。

www.agilent.com/chem/jp31

Agilent 2100 Bioanalyzer

よく報告されるトラブル・ご質問（実験操作編）

チップ調製時Vortex✓ 液が飛び散っていないか確認してください。
! RNA Pico の場合は Pico 用メモリに合わせてください。
! Vortex 時にパラフィルムなどで蓋するなど、上から圧力をかけないでください。
液が飛び散ってしまった場合は、キムワイプなどで拭きとってください。
この際も上から圧力はかけないでください。

電流が適切に流れません。
液漏れ

IV Limit Error Run aborted Error が出て分析がストップしたりデータがノイズでうもれたりします。

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よく報告されるトラブル・ご質問（ 実験操作編）

電極のメンテナンス✓ 1 ヶ月に 1 度、最低でも 2 - 3 ヶ月に 1 度は取りはずして洗浄してください。
✓ DNA1000/7500/12000 と High Sensitivity DNA
RNA Nano と Pico の電極は併用しないでください（p4 参照）。
✓ 電極洗浄後はよく乾燥させてください。
ハードウェア診断 Short Circuit Test を行ってください。

汚れにより電流が適切に流れなかったりノイズが発生したりします。
汚れ泳動が開始できない、泳動遅延やベースライン不安定になる、ノイズピークが発生したりします。

実際の操作は以下の FAQ の資料をご参照ください。

https://www.chem-agilent.com/lsca-booth/BIO_FAQ/index3-Bio.htm#bio01（ログイン名、Password はお問い合わせください）

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Agilent 2100 Bioanalyzer

よく報告されるトラブル・ご質問（Expert 編）

ピークが認識されない設定されている閾値以下のピークは認識されません。
（例：シグナルが弱い、ピークがブロードなど）認識させるために Setpoint の値を変更する必要があります。
① Setpoint Explorer を表示します。
② Threshold の値を変更します。
Slope、Area、Height、Width の 4 つの項目があります。
Default の値より小さな値（0.01 など）を入力します。

2

1

34

よく報告されるトラブル・ご質問（ Expert 編）

バンド・ピークがずれる
マーカーと近い泳動度のピークがある、マーカーのシグナルが低い場合、
間違ったピークがマーカーとして認識されていることがあります。
① Peak Table タブを選択してください。
② 正しいピークを選択し * Table 上で右クリック。
（選択されたピークは ▼ マークが示されます。
）* ピークが認識されていない場合、認識させる必要があります（前頁参照）。
③“Manually Set Lower/Upper Marker”を選択します。

2

3

1

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Agilent 2100 Bioanalyzer

よく報告されるトラブル・ご質問（Expert 編）

RIN が表示されない ver. 02.03 以上 *注）mRNA Assay を選択して泳動した場合、RIN は計算されません。
典型的な total RNA パターンと異なると判定された場合、フラグがたち、RIN が非表示（N/A）となります。⇒ p15「RIN 計算のフロー参照」

RIN を表示させるためにはフラグのたった項目の設定を変更します。
① フラグのたったデータを選択します。
② Error タブを開き、エラーの内容を確認します。
③ Setpoint で“Advanced”を選択します。
④“RNA Integrity Number の項目からエラー内容に該当する項目の値を“1”に変更します。

3

1

2

*ver. 01.0X をご使用の場合、新しい ver をインストールした別 PC で RIN 計算することが可能です。
36よく報告されるトラブル・ご質問（ Expert 編）

rRNA ピークを編集したい
rRNA ピークはマニュアルで調整できます。
① Fragment Table を選択します。
② ベースラインが表示されます。

③ をドラッグしてベースラインを編集します。
④ rRNA のピークが認識されていない場合、右クリックし“Add Fragment”を選択
してください。→② - ③を行います。

2

4

3
1

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Agilent 2100 Bioanalyzer

よく報告されるトラブル・ご質問（Expert 編）

サイズ表示にならない注）ver. 01.02 ではサイズ表示はできません。

アイコンをクリックしても表示が切り替わらない場合、以下の原因が考えられます。

● マーカーが認識されていない場合→マーカーのピークが低い等の場合、ピークとして認識されません。
ピークを認識させ、マーカーを設定してください。
（p.34 の「ピークが認識されない」参照）● 分析途中でストップボタンを押した場合→分析途中のデータ（Marker が認識されていないデータ）があるとサイズ表示されません（次頁参照）。
● Comparison 機能の場合→ Comparison モードではサイズ表示ができません。
Data モードでは同一チップ上のラダを基にサイズを計算しています。
このため、複数のチップ上のデータを比較する Comparison モードでは計算上、サイズ表示が難しく秒表示になります。

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よく報告されるトラブル・ご質問（ Expert 編）

サイズ表示にならない● 分析途中でストップボタンを押した場合→分析途中のデータ（Marker が認識されていないデータ）があるとサイズ表示されません。該当のデータを除く必要があります。
① File メニューから“Save Selected Sample”を選択します。
② 分析途中のデータを除いたサンプルにチェックを入れ、Apply をクリックします。
③ 名前を付けて保存をし、そのファイルを開くとサイズ表示されます。

2
1

3

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Agilent 2100 Bioanalyzer

よく報告されるトラブル・ご質問（実験操作編）

故障かな…と思ったら故障かな…？と思ったらハードウェア診断を行ってください✓ テストチップセットと未使用のチップ 1 枚を使用します。

テストチップ 2 種類

Diode/Electrode Chip
Autofocus Chip

未使用のチップ 1 枚
どの種類のチップでも構いません✓ Fail の項目があった場合、サポートまでご連絡ください

Short Circuit Test が Fail した場合、次頁をご参照ください。

実際の操作は以下の FAQ の資料をご参照ください

https://www.chem-agilent.com/lsca-booth/BIO_FAQ/index3-Bio.htm#bio01（ログイン名、Password はお問い合わせください）40

よく報告されるトラブル・ご質問

Short Circuit Test
Short Circuit Test は漏れ電流をチェックするテストです。
未使用の新しいチップを使用してください。

どの種類のチップでも構いません。
（テスト後、通常の泳動に使用できます。ほこりが入らないよう保管してください。
）
使用済みのチップや Test chip は使用しないでください。

Short Circuit Test が Fail した場合
✓ 設置環境を確認してください。
周辺温度：5 ～ 31 ˚C
相対湿度：80% 未満（室温 5 ～ 31 ˚C の条件下において）
ただし結露しないこと
直射日光やエアコンの風が直接当たる場所への設置は避けてください。

✓ 電極を取り外して洗浄した場合
ピン電極部分（裏も含め）が乾燥していることを確認してください。
半日ほどデシケータなどで風乾してください。
ピン側

裏側

ピンの根元と裏側の溝に水滴が残っていないかチェックしてください。

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Agilent 2100 Bioanalyzer

よく報告されるトラブル・ご質問

修理・点検
修理
G2938A はサポート終了しております。

故障の場合は引き取り修理（ドイツ）となります。

2 つのプランから選択できます（価格はお問い合わせください）。
1. 通常修理

お預かりした装置を修理しお戻しします。
1 ～ 2 ヶ月お時間いただきます。

2. 代替機付き引き取り修理

装置をお預かりしている期間に、代替機をご使用いただけます。

年間保守契約
高額修理費のリスクを避けるため年間保守契約をお勧めしております。
2 つのプランから選択できます。

1. 交換修理サポート契約

バイオアナライザ本体を良品と交換します。

2. 代替品付き引き取り修理サポート契約
装置をお預かりしている期間に、代替機をご使用いただけます。

点検
長い間使用していない装置がある、故障していないかどうかチェックしてほしい等
点検をご希望の場合、内容及び価格をお問い合わせください。

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サポートサイトのご案内
FAQ

https://www.chem-agilent.com/contents.php?id=1004595

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