South Pacific Studies Vol.43, No.1, 2 2023

鹿児島県黒島の在来カンキツ
Local Citrus Grown on Kuroshima Island,
Kagoshima Prefecture
Yamamoto Masashi*, Tani Kanami and Kozai Naoko

Faculty of Agriculture, Kagoshima University, 1-21-24:
Korimoto, Kagoshima, Kagoshima 890-0065, Japan*Corresponding author: e-mail: yamasa@agri.kagoshima-u.ac.jp

山本雅史＊・谷

佳那美・香西直子

鹿児島大学農学部，890-0065

鹿児島市郡元1-21-24

Abstract
We identified eight local citrus accessions grown on Kuroshima Island (approx. N 30˚, E 129˚,
15 km2), Kagoshima Prefecture. Cleaved amplified polymorphic sequence (CAPS) analysis andfruit characteristic investigation were combined for their identification. The results were as follows:‘Kuroshima-mikan’ was Shimamikan (Amami Oshima) (Citrus sp.), ‘Kozumikan’ was Shiikuwasha(C. depressa), ‘Hachigatsu-mikan’ was Kabuchii (C. keraji), ‘Kawabata’ (B) was Kawabata-mikan(C. aurea), ‘Kinebu’ was Kunenbo (C. nobilis), ‘Yurimikan’ was citron (C. medica), and ‘Akamikan’
was pummelo (C. maxima). Although ‘Kawabata’ (A) was closely related to the Chinese mandarin C.
sunki, it was not clear whether they were the same. Although Kuroshima is small, it was identified as
an island with various local citrus genetic resources.
Key words: CAPS, Citron, DNA, Mandarin, Pummelo, the Ryukyu Islands――――――――――――――――――――――――――――――――――――――――――――――
Received: 20 January, 2022
Accepted: 6 April, 2022

2South Pacific Studies Vol.43, No.1, 2 2023

要旨

鹿児島県の黒島（約北緯30度，東経129度，15km2）の在来カンキツ 8 系統を同定した。CAPS（cleaved amplified polymorphic sequence）分析と果実特性調査を組み合わせて実施した。結果は以下の通りである。‘黒島ミカン’は奄美大島の‘シマ
ミカン’（Citrus sp.），‘コズミカン’はシィクワーサー（C. depressa），‘八月ミカン’はカーブチー（C. keraji），‘カワバタ’（B）は川畑ミカン（C. aurea），‘キネーブ’
はクネンボ（C. nobilis），‘ユリミカン’はシトロン（C. medica）および‘赤ミカン’
はブンタン（C. maxima）と考えられた。‘カワバタ’（A）は中国のマンダリンのスンキ（C. sunki）と近縁であったが，同一か否かは解明できなかった。以上，黒島は小面積であるものの，豊富な在来カンキツ遺伝資源が存在する島であることがわかった。
キーワード：ブンタン，CAPS，DNA，マンダリン，南西諸島，シトロン

緒 言
黒島は鹿児島県鹿児島郡三島村に属する約15km2の島である。北緯30度，東経129度に位置し（Fig. 1），南西諸島最北となる。黒島の主要な農産物はシイタケやタケノコであるが，栽培規模は小さいものの在来カンキツの‘黒島ミカン’が特産品として有名であり，加工品等も開発されている。
筆者らは‘黒島ミカン’の研究を目的に現地調査を実施したところ，その他にも様々な
在来カンキツが栽培されていることを確認しFig. 1. Location of Kuroshima Island.
た（山本ほか 2021）。しかし，鳥害等で‘黒島ミカン’以外の果実は調査できなかった。
その後，収集した穂木に由来する複製樹を鹿児島大学農学部で栽培したところ，すべてではないものの果実が結実を開始し，その特性の調査が可能となった。既に，‘黒島ミカン’，‘コズミカン’および‘キネーブ’については DNA 分析と現地における果実特性から，その種類を特定した（Yamamoto et al. 2021a, b，2022）。本研
究ではそれをさらに発展させ，新たに果実を調査して，前述の 3 系統も含めた黒島
在来カンキツ 8 系統について，果実特性と DNA 分析の結果を組み合わせ，それらの同定を実施した。南西諸島の在来カンキツ研究において果実特性と DNA 分析を組み合わせることの有効性は既に報告されている（Yamamoto et al. 2021a, b）。
DNA 分析としては CAPS（cleaved amplified polymorphic sequence）分析を実施した。CAPS 分析は電気泳動で遺伝子型が検出できる簡便な手法であるが，信頼性は極めて高い（Konieczny and Ausubel 1993）。Shimada et al.（2014）によってカンキツ用の多数のマーカーが開発され，在来カンキツの類縁関係解明にも利用されている（Yamamoto et al. 2021a, b，2022）。

YAMAMOTO Masashi, et al.: Local Citrus Grown on Kuroshima Island, Kagoshima Prefecture3

本研究において得られた結果は，小面積ながら黒島には多様な在来カンキツが栽培されていることを示すものであり，南西諸島および鹿児島県の在来カンキツの分布についての新知見を含むものであった。ここにその結果を報告する。

材料および方法

植物材料
黒島の現地調査は2016年 2 月に実施した（山本ほか 2021）。‘カワバタ’は名称が同一でも異なるものが存在するとのことであったので，本研究では‘カワバタ’（A）および‘カワバタ’（B）とした。穂木を採取してカラタチに接木し，2018年
2 月に鹿児島大学農学部附属農場唐湊果樹園に定植し，一般的な方法で管理した。
DNA 分析CAPS 分析においては，定植した黒島の 8 系統および Table 1 に示した対照48系
統を供試した。DNA は ISOPLANTⅡ（ニッポンジーン，東京）を用いて葉から抽Table 1. Citrus accessions grown on Kuroshima Island and their control used in the DNA
analysis.
Accession
Latin nameLocal citrus grown on Kuroshima Island
Kuroshima-mikan
Kozumikan
Hachigatsu-mikan
Kawabata (A)Kawabata (B)KinebuYurimikan
Akamikan
Control
Melanesian papeda
Citrus macroptera Montr.
Khasi papeda
C. latipes (Swingle) Tanaka
SwangiC. hystrix DC.
Citron 'Marubusshukan'
C. medica L.
Mexican lime
C. aurantifolia (Cristm.) Swingle
Lemon 'Eureca'
C. limon (L.) Burm f.
RangpurC. limonia Osb.
Meyer lemon
C. meyeri Y. Tanaka
BergamotC. bergama Risso et Poit.
Pummelo 'Banpeiyu'
C. maxima (Burm.) Merr.
Pummelo 'Mato Anyu'
C. maxima (Burm.) Merr.
Pummelo 'Chandler'
C. maxima (Burm.) Merr.
Pummelo 'Otachibana'C. maxima (Burm.) Merr.
Hassaku
C. hassaku hort. ex. Tanaka
Nastudadai
C. natsudaidai Hayata

4South Pacific Studies Vol.43, No.1, 2 2023

Sour orange
Chinotto
Rokugatsu mikan
ShiikuSweet orange 'Hamlin'
TankanIyo
Hyuganatsu
Kawabata-mikan
Hetsuka Daidai
Ichang papeda
Yuzu
King
KunenboSatsuma mandarin
Keraji
Kabuchii
Oto
TarogayoPonkanGenshokan
Clementine
Tachibana
Kishu mikan
Shimamikan (Amami Oshima)
Sunki
Cleopatra
Koji
Shiikuwasha 'Ogimi Kuganii'
Shiikuwasha 'Shiikunin' (Ama)
Shiikuwasha 'Ishikunibu'
Shiikuwasha 'Shiikuribu'
Calamondin

C. aurantium L.
C. myrtifolia Raffin
C. rokugatsu
C. sp.
C. sinensis (L.) Osb.
C. tankan Hayata
C. iyo hort. ex. Tanaka
C. tamurana hort. ex. Tanaka
C. aurea hort. ex. Tanaka
C. sp.
C. ichangensis Swingle
C. junos Siebold ex Tanaka
C. nobilis Lour.
C. nobilis Lour.
C. unshiu Marcow.
C. keraji hort. ex. Tanaka
C. keraji hort. ex. Tanaka
C. oto hort. ex. Tanaka
C. tarogayo hort. ex. Tanaka
C. reticulata Blanco
C. genshokan hort. ex. Tanaka
C. clementina hort. ex. Tanaka
C. tachibana (Mak.) Tanaka
C. kinokuni hort. ex. Tanaka
C. sp.
C. sunki hort. ex. Tanaka
C. reshni hort. ex Tanaka
C. leiocarpa hort. ex. Tanaka
C. depressa Hayata
C. depressa Hayata
C. depressa Hayata
C. depressa Hayata
C. madurensis Lour.

出した。16種類のマーカー（Table 2）（Shimada et al. 2014）を用いた。 PCR の反応
液は 1 点当たり12.5 µL であり，10 ng の DNA，10 pmol の各プライマー，0.2 mMの dNTP，0.5unit の Prime Taq DNA polymerase（GenetBio 社，韓国），1/10量の10×Buffer を含んだ。PCR 反応にはサーマルサイクラー Veriti200（Applied Biosystems，アメリカ）を用い，はじめに94℃で 3 分間，続いて94℃の熱変性を30秒間，62℃のアニーリングを30秒間，72℃の伸長反応を 1 分間の増幅サイクルを 2 回繰り返し，
その後アニーリング温度を60℃，58℃，56℃にして，各アニーリング温度で 2 回繰り返した。さらに，94℃の熱変性を30秒間，54℃のアニーリングを30秒間，72℃の5

YAMAMOTO Masashi, et al.: Local Citrus Grown on Kuroshima Island, Kagoshima Prefecture

Table 2. Characteristics of the CAPS markers used in this study and the genotype combinations for
the CAPS analysis of citrus accessions grown on Kuroshima Island and their control.
Markerz

Restric-

Approximate

name

tion

size ofenzymepolymorphic

Genotype
Kuroshima- Kozumikan Hachigatsu- Kawabata Kawabata
mikan
and

allele (bp)
a

mikan
and

and

Shimamikan Shiikuwasha Kabuchii

b

(A)
and
Sunki

‘Shiikuribu'

KinebuYurimikan Akamikan

(B)
and

and

Kawabata- Kunenbo
mikan

and

and

CitronPummelo‘Maru-'Otachibana'busshukan'
Cp1143

Hha I

800

500

bb

bb

bb

bb

bb

ab

aa

aa

Gn0029Hinf I

450

250

bb

bb

bb

bb

ab

ab

aa

bb

Tf0001

Msp I

650

300

ab

bb

bb

bb

bb

ab

bb

aa

Tf0042

Hha I

300

200

bb

ab

ab

bb

ab

bb

aa

bb

Tf0154

Hae III

1100

900

bb

ab

ab

bb

bb

ab

bb

aa

Tf0168

Rsa I

1200

600

aa

aa

aa

ab

bb

ab

aa

aa

Tf0235

Hae III

700

450

aa

aa

aa

aa

ab

aa

aa

ab

Tf0300BamH I

700

500

aa

aa

ab

aa

aa

ab

bb

bb

Tf0315Hinf I

300

200

bb

bb

bb

bb

bb

bb

aa

aa

Tf0350

Dra I

900

650

aa

aa

aa

aa

aa

ab

aa

bb

Tf0364

Hinf I

800

400

bb

ab

ab

bb

ab

bb

aa

aa

Tf0368

Rsa I

350

250

aa

aa

aa

aa

ab

ab

ab

ab
bb

Tf0386

Msp I

550

300

aa

aa

aa

aa

ab

aa

bb

Tf0396

EcoR V

600

300

ab

ab

aa

aa

aa

aa

aa

aa

Tf0419Pvu II

700

400

bb

ab

bb

ab

bb

bb

bb

bb

Tf0420

HaeIII

400

200

ab

ab

ab

ab

ab

ab

aa

aa

z

SHIMADA et al. (2014).

伸長反応を 2 分間の増幅サイクルを35回繰り返し，最後に72℃を 7 分間とした。
PCR 後の DNA 増幅産物を用いて，制限酵素処理を行った。4 µL の増幅産物に 1µL の反応緩衝液， 2 ～ 3 ユニットの制限酵素に滅菌水4.8 µL 混合して10 µL とし，
10× Buffer 1 µL，各制限酵素を 0.2 µL 混合し，制限酵素反応液を作製した。制限酵素反応は37℃で 4 時間以上とした。
制限酵素処理した DNA は，1.5％アガロースゲル電気泳動を実施し，GelRed（Biotium，アメリカ）で染色して出現バンドを確認した。その結果に基づいて，遺伝子型（aa，ab または bb）を決定した。黒島の在来カンキツと対照系統の遺伝子型を比較することによって，在来カンキツ系統同定の一助とした。
果実特性
定植後，2020年度から 6 系統において果実の結実が認められたので，適宜調査した。カワバタ（B）およびキネーブは樹体成長が芳しくなく，2021年度まで未結実であった。 1 系統あたり 1 樹を供試し，成熟に近いと判断した時期に果実を 5 果採取して，直ちに調査した。系統毎の調査日および調査項目は Table 3 の通りであった。八月ミカン以外の 5 系統では 5 果の果汁を混合して糖度および滴定酸含量を測定した。八月ミカンでは 1 果ずつ定量した。また，‘赤ミカン’のみは2022年 1 月
24日に自然受粉果 5 果の種子数を追加調査した。

6South Pacific Studies Vol.43, No.1, 2 2023

Table 3. Fruit characteristics of local citrus collected on Kuroshima Island.
KuroshimaHachigatsuKozumikan
mikan
mikan

Kawabata(A)

Yurimikan

Akamikan
Feb. 25,
2021

Date of analysis

Dec. 16,
2021

Dec. 22,2020

Nov. 26,
2021

Dec. 16,2021

Feb. 25,
2021

Fruit weight (g)35.1±3.8y27.0±1.2

49.1±2.3

40.1±2.4

436.5±36.8 487.9±32.1

130.0±4.1133.8±7.9131.0±2.0

128.4±3.5

73.5±9.2

122.7±1.9

OrangeYellow

D/H indexz

Skin color

OrangeOrangeYellowReddishorangeFruit surface

SmoothSlightlysmoothMediumSmoothMediumSmoothKabuchii

Unknown

CitronPummelo

FlavorKuroshimaShiikuwasha
mikan

Puffing

None

LittleMedium

None

None

None

Peeling

Easy

Easy

Easy

Easy

Difficult

DifficultGranulation

None

None

None

None

None

None

Flesh color

OrangeOrangeYellowish
Yellowish
Deep orangeorangeorangeNo. of segments per fruit

8.6±0.98.9±0.3

9.6±0.2

Pulp firmness

Soft

Soft

Brix

11.7

9.8

Titratable acid content (%)

1.20

2.50

0.98±0.03

Yellow

8.3±0.3

10.7±0.9

14.7±0.9

Soft

Soft

Hard

Medium

10.7±0.2

13.0

12.2

10.1

2.30

0.18

1.27

Bitterness

None

None

None

None

None

BitterAverage number of seeds per fruit

10.0±1.6

9.7±1.512.2±1.7

3.3±0.937.3±12.7

6.0±3.1

Cotyledon color

Pale green,
Green

Pale green

Pale green

Pale green,
Green

Cream

Cream

Seed embryony

Poly

Poly

Poly

Poly

Mono

Mono

z

(Diamater/height)×100.
yStandard error.

結

果DNA 分析CAPS 分析の結果，黒島の在来カンキツ 8 系統の遺伝子型はすべて異なった（Table 2）。対照48系統ではサワーオレンジ（ダイダイ）とキノット（マートルリーフ）の遺伝子型が16種類のマーカーすべてで一致したが，他は相互に区別できた（データ未掲載）。黒島の在来カンキツと対照系統の遺伝子型を比較したところ，‘黒島ミカン’は奄美大島の‘シマミカン’（Citrus sp.），‘コズミカン’は沖永良部のシィクワーサーである‘シークリブ’（C. depressa），‘八月ミカン’はカーブチー（C.
keraji），‘カワバタ’（A）はスンキ（C. sunki），‘カワバタ’（B）は川畑ミカン（C.
aurea），‘キネーブ’はクネンボ（C. nobilis），‘ユリミカン’はシトロンの‘マル
ブッシュカン’（C. medica）および‘赤ミカン’はブンタンの‘オオタチバナ’（C.
maxima）と16種類の遺伝子型が一致した（Table 2）。
果実特性
結実した 6 系統の果実写真を Fig. 2 に，果実調査の結果は Table 3 に示した。‘黒島ミカン’，‘コズミカン’，‘八月ミカン’および‘カワバタ’（A）の果実重はい

YAMAMOTO Masashi, et al.: Local Citrus Grown on Kuroshima Island, Kagoshima Prefecture

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Fig. 2. Photographs of fruit of accessions grown on Kuroshima Island. 1: Kuroshima-mikan, 2:
Kozumikan, 3: Hachigatsu-mikan, 4: Kawabata (A), 5: Yurimikan, 6: Akamikan.

ずれも50g 以下と小果で，剝皮性に優れ苦みもなく，多胚性であるなど典型的なマンダリンの特性を示した。詳細に観察すると，外観，香りおよび果汁特性のいずれもが‘黒島ミカン’はシマミカン，‘コズミカン’はシィクワーサー，‘八月ミカン’はカーブチーと同様であった。‘カワバタ’（A）については，小果で果皮の赤みが強く，比較的高酸で，香りは弱く，やや臭みがあり，南西諸島の在来カンキツでは該当するものがなかった。一方，‘ユリミカン’はシトロンおよび‘赤ミカン’はブンタンと考えられた。
‘ユリミカン’の外観および香りは典型的なシトロンであった。単胚性であることもシトロンと同様であった。滴定酸含量が0.18％であり，無酸系統だと考えられた。‘赤ミカン’は果実重が約500g とブンタンとしては小果であったが，その他の果実特性は典型的なブンタンであった。ただし，種子数が少なかった。子細に観察すると，完全種子は少ないものの多数の不完全種子が認められた。そのため，翌年に再度果実を調査したところ，完全種子が40.8±0.8個で，不完
全種子は少なかった。

考 察
本研究において DNA 分析および果実特性の結果を組み合わせた結果，黒島の在来カンキツ系統の同定を進展させることができた。CAPS 分析において，対照48系
統はサワーオレンジとキノットが同じ遺伝子型を示したことを除いてすべて区別可能であったことから，その識別能は高いものと考えられた。結果に基づいた各 8 系
統の特徴は以下の通りである。
‘黒島ミカン’は鹿児島県の多くの島嶼でクロシマミカンやシマミカンと呼ばれる在来カンキツであり，これについては既に報告した（Yamamoto et al. 2021a）。既報（Yamamoto et al. 2021a）の現地における栽培樹と本研究で供試した保存樹の果
実特性はほぼ同じであった。

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CAPS 分析の結果に基づき，‘コズミカン’がシィクワーサーであることは報告済みである（Yamamoto et al. 2022）。しかし，その果実特性は本研究で新たに確認できた。小果で果皮が橙色，シィクワーサーの香りを備え，高酸で，子葉（胚）色が緑色で多胚性と，シィクワーサーの特性を示した。CAPS 分析の遺伝子型だけでなく，果実特性からも‘コズミカン’がシィクワーサーであることが確認できた。
既報の通り（Yamamoto et al. 2022），知られている限り最北に分布するシィクワー
サー遺伝資源である。
‘八月ミカン’がカーブチーであることは本研究で初めて明らかとなった。CAPS
分析ではカーブチーと区別できず，果実特性もカーブチーと一致した。本種は南西諸島に広く分布している。カーブチーは沖縄県での呼称である。トカラの中之島の‘ショウコウ’が最北に分布するカーブチーと考えられていたが（Yamamoto et al.
2021b），本研究の結果，在来カンキツとしてのカーブチーの分布の北限が更新された。また，種子島で‘バカミカン’と呼ばれるカンキツも果実特性からカーブチーの可能性がある。このようなことから，カーブチーは南西諸島の北端まで分布しているものと推察できた。これらは，何らかの形で南方から伝播したものと考えられた。
‘カワバタ’（A）は DNA 分析ではスンキと区別できなかったが，果皮色等，果実特性は鹿児島大学農学部で保存しているスンキとは異なるものと考えられた。本
研究で用いた CAPS マーカー16種類は品種系統の識別に有効であるが，これですべての品種系統が区別できるものではない。‘カワバタ’（A）はスンキと極めて近縁なカンキツと考えられるが，スンキではない可能性が強い。スンキは中国に自生するカンキツである（田中 1948）。筆者らの調査において南西諸島では‘カワバタ’（A）と類似する在来カンキツは見つかっていない（山本ほか 2006，2021）。このことから，本系統は中国に由来するカンキツの可能性が強い。さらに多数のマーカーを用いることで，‘カワバタ’（A）とスンキとの関係が明らかになるものと考
えられる。
一方，
‘カワバタ’（B）は川畑ミカンと同一の遺伝子型を示した。このことから，
黒島においては‘カワバタ’が複数のカンキツの呼称として用いられていることがDNA レベルで確認できた。‘カワバタ’（B）は果実を確認できなかったが，DNA
分析の結果およびその呼称から川畑ミカンの可能性が強い。川畑ミカンは鹿児島県の加世田原産とされる（田中 1948）。以前は鹿児島県内で広く栽培されていた。
何らかの形で鹿児島県本土から黒島に持ち込まれたものと考えられる。‘カワバタ’（B）については今後，果実特性の調査が必要である。
‘キネーブ’も結実していない。この CAPS 遺伝子型がクネンボと同様であることは，既報（Yamamoto et al. 2021b）で報告した。現地調査での聞き取り調査から，形態的特性はクネンボのものであり，DNA 分析の結果と総合してクネンボと考えられる。クネンボはベトナム原産の導入種であるが（田中 1948），南西諸島では重要な在来カンキツである（山本ほか 2006，2021）。
‘ユリミカン’は CAPS 遺伝子型がシトロン‘マルブッシュカン’と同一で，形態的にも典型的なシトロンであったことから，シトロンと考えて間違いない。ただし，‘マルブッシュカン’と同一か否かについては，さらなる研究が必要である。
本研究の CAPS 分析において‘マルブッシュカン’は他のカンキツと区別できたが，

YAMAMOTO Masashi, et al.: Local Citrus Grown on Kuroshima Island, Kagoshima Prefecture

9

供試したシトロンが‘マルブッシュカン’のみであり，シトロン内での多様性が未解明のままである。シトロンにも多様性があるので（田中 1946），‘ユリミカン’の同定には詳細な形態的特性の解明や複数のシトロンの品種系統との比較が必要である。筆者らは南西諸島において約200点の在来カンキツ系統を調査したが（山本ら 2006，2021），シトロン遺伝資源は確認できなかった。‘ユリミカン’は初めて確認できたシトロンである。シトロンはインド原産で，江戸時代の文献に記載されており（田中 1946），古くから日本に伝播したが，寒さに弱いため（山本ほか
2017），日本の多くの地域では露地栽培は困難である。しかし，冬季温暖な南西諸島では越冬も可能である。そのため，黒島では‘ユリミカン’の栽培が続けられていたと考えられる。ただし，黒島は南西諸島の北端に位置し，黒島よりも冬季の気温が高い奄美群島や沖縄諸島，先島諸島ではシトロンが確認されていない。現地調査において，黒島では‘ユリミカン’の果実を正月に飾ることがあることを確認した。‘ユリミカン’が現在まで残っていたのは自然的要因だけでなく，社会的・文化的要因に拠るのかもしれない。
‘赤ミカン’は CAPS 遺伝子型がブンタン‘オオタチバナ’と同一で，やや小果であるものの形態的にも典型的なブンタンあったことから，ブンタンと考えられる。本研究で供試したブンタン 4 品種は CAPS 分析で相互に区別できた。その中で‘赤ミカン’は‘オオタチバナ’と遺伝子型が同一であった。‘オオタチバナ’もブンタンとしては果実が小さめで‘赤ミカン’の特性とも一致した。2021年 2 月の調査果実では完全種子数が少なく，不完全種子が多かったことから，翌年 1 月に種子数のみを再度調査したところ，40.8±2.6個の完全種子が確認できた．‘オオタチバ
ナ’では完全種子数が約60個以上，不完全種子数が約20個であった（山本ほか
2015）。このことから，2021年に完全種子が少なく不完全種子が多かったのは開花期の天候や訪花昆虫の活動など環境条件によるものと推察できた。以上から，‘赤ミカン’の方がやや種子数は少ないものの，‘赤ミカン’と‘オオタチバナ’は同一の可能性がある。‘オオタチバナ’の起源は不明であるが，鹿児島県本土で発生したようである（桑波田 1993）．おそらく，‘赤ミカン’は本土から導入されたのであろう．
本研究の結果，黒島における在来カンキツの分布の一部を解明することができた。黒島には‘コズミカン’（シィクワーサー），‘キネーブ’（クネンボ）や‘八月
ミカン’（カーブチー）のように南西諸島に広く分布するもの，鹿児島県の島嶼部に広く分布する‘黒島ミカン’（シマミカン / クロシマミカン）や，‘カワバタ’（B）（川畑ミカン）のように鹿児島県本土に分布するカンキツが確認できた。また，‘ユ
リミカン’は筆者らの南西諸島在来カンキツにおけるこれまでの調査で唯一確認できたシトロンであった。その他，‘カワバタ’（A）（マンダリン）は他では見つかっていない貴重な遺伝資源の可能性がある。以上，黒島は小面積であるものの，シィ
クワーサーやカワバタミカン等，南西諸島および鹿児島県本土，両者の在来カンキ
ツが生育する遺伝資源的に極めて興味深い島であることがわかった。今後は遺伝資源の分布や利用に関する歴史的または社会的な研究も進める必要がある。

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謝 辞
供試樹の管理においては鹿児島大学農学部附属農場唐湊果樹園の福留弘康氏，廣瀬 潤氏，西澤 優氏および川口昭二氏の協力を得た。ここに感謝する。本研究の一部は「世界自然遺産候補地 ･ 奄美群島におけるグローカル教育研究拠点形成」予算で実施した。
引用文献
Konieczny, A. and Ausubel, F. 1993. A procedure for mapping Arabidopsis mutations
using co-dominant ecotype-specific PCR-based markers, Plant J., 4: 403–410.
桑波田竜沢 1993．鹿児島県における大橘栽培の概況．「特産のくだもの ぶんたん2」，81–89，日本果樹種苗協会，東京．
Shimada, T., Fujii, H., Endo, T., Ueda, T., Sugiyama, A., Nakano, M., Kita, M.,
Yoshioka, T., Shimizu, T., Nesumi, H., Ikoma, Y., Moriguchi, T. and Omura, M. 2014.
Construction of a citrus framework genetic map anchored by 708 gene-based markers,
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