薬 剤 学, 71 (2), 104‑108 (2011)≪若手研究者紹介≫

静電的相互作用を基盤とした生体適合型遺伝子ベクターの開発

黑 﨑 友 亮*Tomoaki Kurosaki

長崎大学病院薬剤部決するために，微粒子の表面を親水性高分子である

1．は じ め にpolyethyleneglycol（PEG）を用いて修飾した遺伝

遺伝子治療は先天性遺伝子欠損症や癌，感染症に子ベクターが開発されている．しかし，PEG 修飾し対する次世代の治療技術として注目されている．効た遺伝子ベクターは，毒性が大きく軽減されるが，果的な遺伝子治療の実現には，安全でかつ高い遺伝

その立体障害のために細胞との接触が減少し，遺伝子導入効果を有する遺伝子ベクターの開発が不可欠

子発現効率が極端に低下することが知られている．

である．遺伝子ベクターは主にウイルスベクターとさらに，臓器選択性や遺伝子発現効率の向上を目的非ウイルスベクターの二種類に分類される．このうとして，PEG 鎖を抗体やリガンドなどで有機化学的ち，ウイルスベクターは遺伝子導入効率が高く，こに修飾した新規遺伝子ベクターが開発されているが，れまでに多くの臨床試験に用いられたものの，発癌複雑に有機合成された化合物は生体に投与した場合性や免疫原性などの致命的な副作用が明らかとなに，予期しない重篤な副作用の原因となることが懸り，現在は構造が明確で免疫原性が少ない非ウイル念される．また，成分や調製方法が錯雑な遺伝子ベスベクターへの期待が高い．

クターは医薬品としての応用が非常に困難である．

非ウイルスベクターの構成成分として，カチオン

著者らはこれまでに，生体適合性のアニオン性化性高分子やカチオン性リポソームなどのカチオン性合物を用いてベクター表面を静電的に被膜することの化合物が数多く研究・開発されている．アニオンによって，安全性を大きく向上できることを見出し性の遺伝子に対し，カチオン性の化合物を過剰に添た．さらに，ある種のアニオン性化合物を用いた被加することにより，表面がカチオン性に帯電したナ膜によって，遺伝子医薬品を安全かつ効果的に細胞ノサイズの微粒子を形成することができる．これら内へ送達できることを発見した．本稿では，この技のカチオン性微粒子はアニオン性に帯電した細胞膜術を用いた新規遺伝子ベクターの特徴と今後の展望と静電的に強く結合することによって，高い遺伝子について紹介したい．

発現効果を示すことから，遺伝子ベクターとして汎用されている．一方で，カチオン性の遺伝子ベクタ

2．生体適合型遺伝子ベクター（ternary complex）の開発

ーはその表面電位に比例して，細胞障害性や生体成分との凝集などの副作用が増大することが知られて非ウイルス性遺伝子ベクターの中でも，カチオン性高分子である polyethylenimine（PEI）は静電的いる．
このようなカチオン性遺伝子ベクターの欠点を解相互作用による DNA の微粒子化や proton sponge
効果によるエンドソームの破壊など，遺伝子導入に*2005 年，長崎大学薬学部薬科学科を卒業．同年，長崎大学大学院医歯薬学総合研究科へ進学．2010 年，博士（薬学）の学位を取得．2010 年 4 月より，長崎大学
病院薬剤部に COE 研究員として配属し，現在に至る．
好きな言葉：成功者は走り出してから考える．趣味：
水泳，旅行．連絡先：〒852–8501 長崎市坂本 1–7–1
E-mail: kurosaki@nagasaki-u.ac.jp
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優れた性質を持ち，PEI を用いて pDNA を微粒子化した pDNA/PEI complex は，in vitro と in vivo の両条件下で高い遺伝子発現を示すことが知られている．PEI は特に肺における遺伝子発現に優れ，既に
試 薬 と し て も 市 販 さ れ て い る（in vivo jet-PEI,

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Polyplus-transfection 社）． 一 方 で，pDNA/PEIるように調製しており，総電荷が＋1 であるにもかcomplex は微粒子表面に強いカチオン性を帯びていかわらず，明らかなアニオン性を示したことから，るために，細胞障害性や血液成分との凝集などの重微粒子表面にアニオン性高分子による被膜層が形成

篤な副作用の原因となることが報告されている．まされたことが推察される．また，heparin sulfate な

た，pDNA/PEI complex は細胞膜上のアニオン性のどの一部のアニオン性高分子は pDNA/PEI complex

proteoglycans と非特異的に結合するため，臓器やの電気的な結合を崩壊し，pDNA の安定性を損なう細胞レベルでの遺伝子発現制御が困難である．

ことが知られている．そこで，ternary complex のそこで本章では，pDNA/PEI complex の副作用や安定性をアガロースゲル電気泳動法を用いて評価し欠点を改善する目的で，様々な生体適合性のアニオたところ，全ての ternary complex において pDNAン性高分子を用いて，pDNA/PEI complex を静電的の流出は認められず，安定な微粒子の形成が確認でに被膜した生体適合型遺伝子ベクター（ternaryきた．

complex）の開発を行った（Fig. 1）．生体適合性のアニオン性高分子として polyadenylic acid (polyA)，3．Ternary complex の毒性と遺伝子発現効果の評価

polyinosinic-polycytidylic acid (polyIC)，a-polyaspartic

非ウイルスベクターはウイルスベクターと比較しacid (a-PAA)，a-polyglutamic acid (a-PGA)，て，免疫原性や発癌性などの観点から安全性が高い

g-polyglutamic acid (g-PGA) を 用 い て，ternaryとされるものの，細胞障害性や赤血球との凝集，塞complex を作製し，その有用性について評価した．

栓症などの副作用が知られている．そこで，ternary

これまでに，カチオン性の遺伝子ベクターをアニcomplex の赤血球凝集と細胞障害性について評価しオン性高分子を用いて被膜した報告があるものの，た．この結果，アニオン性高分子を用いて pDNA/300〜1,000 nm 前後の極めて大きな粒子が形成され，生体への適応が困難であった．本研究では，種々のアニオン性高分子と pDNA/PEI complex を静電的に自己組織化し，粒子径が 100 nm 以下で，表面がアニオン性に帯電した ternary complex の構築に成功した（Table 1）．さらに，作製した ternary complex は pDNA のリン酸基と PEI のアミノ基，アニオン性高分子の負の官能基の電荷比が 1：8：6 とな

Fig. 1. Formation of ternary complexes with anioniccharge.
Table 1．Particle size and z-potential of the complexes.
Complexes

Size (nm)z-Potential (mV)

pDNA/PEI
pDNA/PEI/polyA
pDNA/PEI/polyIC
pDNA/PEI/a-PAA
pDNA/PEI/a-PGA
pDNA/PEI/g-PGA

65.4±15.852.0±14.440.2±8.3
84.5±3.285.1±8.0
88.9±3.8＋55.5±0.7−18.9±0.4**−19.6±0.2**−39.7±0.1**−22.9±0.6**−28.4±1.3**

Mean±S.E. (n＝3), ** : p＜0.01 vs. pDNA/PEI.

Fig. 2. Aggregations (A) and cytotoxicities (B) of thecomplexes.
(A) Each complex was added to erythrocytes
and agglutinations were observed by phasemicroscopy (400×magnification). (B) B16F10 cells were incubated with various complexes for 2 h and cell viability was measured
at 24 h after treatment by WST-1 assay. Eachdatum represents the mean±S.E. (n＝13). **:p＜0.01 vs. control.

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PEI complex を被膜することで，pDNA/PEI complexによる赤血球の凝集や細胞障害性を著しく軽減することに成功した（Fig. 2）．これらの副作用の軽減

4．pDNA/PEI/g -PGA complex の遺伝子発現メカニズムの解明

は，アニオン性高分子によって形成された微粒子表

この pDNA/PEI/g-PGA complex の高い細胞内取面のアニオン性の被膜層が，赤血球や細胞膜との相り込みには，何らかの特殊な取り込み機構が関与し互作用を消失させたことに起因すると推察される．ている可能性がある．そこで，低温条件下またはしかしながら，アニオン性の遺伝子ベクターはカg-PGA，L-glutamic acid の 共 存 下 で pDNA/PEI/

チオン性の遺伝子ベクターとは異なり，細胞膜と静g-PGA complex を細胞に添加し，細胞内取り込み量電的に反発するため，毒性は軽減するものの，細胞と遺伝子発現量を測定した（Fig. 4）．pDNA/PEI/との接触や細胞内への取り込み，遺伝子発現が大幅g-PGA complex の細胞内取り込み量と遺伝子発現量に減少することも予測された．そこで，次に各遺伝は低温条件下で大きく減少し，エネルギー依存性の子ベクターの細胞内取り込みや遺伝子発現について取り込み機構の関与が示唆された．さらに，g-PGA検討を行った（Fig. 3）．この結果，カチオン性のの添加で pDNA/PEI/g-PGA complex の細胞内取り

pDNA/PEI complex は高い細胞内取り込みと遺伝子込み量と遺伝子発現量は濃度依存的に減少した．し発現を示したが，多くのアニオン性の ternary com-かし，L-glutamic acid は細胞内取り込み量や遺伝子plex では，細胞内取り込み量と遺伝子発現量が大き発現量に影響しなかった．これらの結果から，pDNA/く低下した．しかしながら，g-PGA を用いて被膜しPEI/g-PGA complex が g-PGA に特異的な受容体をた pDNA/PEI/g-PGA complex は，アニオン性であ介して，エネルギー依存的に細胞内に取り込まれてるにも関わらず，pDNA/PEI complex と比較して有いることが示された．

意に高い細胞内取り込みを示し，極めて高い遺伝子以上，g-PGA を用いて pDNA/PEI complex を静電的に被膜することで，細胞毒性と血液凝集を大き発現が観察された．

く低減しながら，効率的に遺伝子を導入できる画期

Fig. 3. Uptake efficiencies (A) and transgene efficiencies (B) of ternary complexes.
B16-F10 cells were transfected with complexes containing pCMV-Luc and Rhodamine-PEI(Rh-PEI). Twenty-four hours after transfection, fluorescence of Rh-PEI (A) and luciferase activity (B) were evaluated. Each bar
represents the mean±S.E. (n＝6). **: p＜0.01
vs pDNA/PEI complex.
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Fig. 4. Effect of the inhibitors on the uptake efficiency (A) and transfection efficiency (B) of
pDNA/PEI/g-PGA complex.
pDNA/PEI/g-PGA complex was transfected inmedium which was at 4˚C or contained various concentrations of g-PGA and L-glutamicacid. Twenty-four hours after transfection,fluorescence of Rh-PEI (A) and luciferase activity (B) were evaluated. Each bar represents the mean±S.E. (n＝6). *: p＜0.05, **: p＜0.01 vs control.

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的な新規遺伝子ベクターの開発に成功した 1）．
5．g -PGA 被膜型遺伝子ベクターの開発 2）の複合体に g-PGA を添加した結果，複合体の凝集や崩壊を引き起こすことなく，表面がアニオン性に帯電したナノサイズの安定な微粒子を形成することがさらに，著者らは様々なカチオン性の遺伝子ベク可能であった．そこで次に，g-PGA 被膜型遺伝子ベ

ターと pDNA との複合体を g-PGA を用いて被膜しクターの in vitro における有用性を評価した（Fig.

た g-PGA 被膜型遺伝子ベクターを新たに開発し，そ5）．この結果，これらアニオン性の g-PGA 被膜型遺の有用性について検討を行った．カチオン性の遺伝

伝子ベクターは B16-F10 細胞において，内包したカ子ベクターとして poly-L-lysine (PLL) や poly-L-

チオン性の遺伝子ベクターと同等またはそれ以上のarginine (PLA)，
N-[1-(2,3-dioleyloxy)propyl]-N,N,N-遺伝子発現効果を示した．これらの g-PGA 被膜型遺trimethylammonium chloride (DOTMA)-cholesterol

伝子ベクターは pDNA/PEI/g-PGA complex と同様(Chol) liposome や DOTMA-L-a-dioleylphosphati-に，g-PGA に特異的な取り込み機構を介して細胞内dylethanolamine (DOPE) liposome を用いた．PLLへ取り込まれているものと推察される．さらに，や PLA は生体分解性のカチオン性高分子として知g-PGA 被膜型遺伝子ベクターは，細胞障害性を大きら れ て お り， 生 体 適 合 性 が 極 め て 高 い． ま た，く改善していることを見出した．また，g-PGA を用DOTMA-DOPE liposome は lipofectin として市販いた被膜によって，内包するカチオン性遺伝子ベクされている遺伝子導入試薬であり，in vitro で高いターの赤血球凝集や溶血が大きく軽減されることも遺伝子導入効果を示すことが知られている．さらに，確認している．

DOTMA-Chol liposome は DOTMA-DOPE liposome

そこで，各遺伝子ベクターをマウスへ静脈内投与と比較して in vivo における遺伝子発現効果が高い

し，6 時間後の遺伝子発現量を測定した（Fig. 6）．

ことが報告されている．

この結果，pDNA/PLA complex と pDNA/PLL com-

これらのカチオン性の遺伝子ベクターと pDNA とplex は肺で，pDNA/DOTMA-Chol complex と pDNA/Fig. 5. Transfection efficiencies (A) and cytotoxicities (B) of various complexes.
B16-F10 cells were transfected with the various complexes. 22 h after transfection,luciferase activities (A) and cell viabilities (B) were determined. Each bar represents the mean±S.E. (n＝3 or 12), **: p＜0.01, ##: p＜0.01 vs control.
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なアニオン性化合物を用いることで，安全性が大きく向上し，遺伝子医薬品を特定の臓器へ選択的に送達する事ができる画期的な新規遺伝子ベクターの開発に成功している 3, 4）．この技術は pDNA のみならず，siRNA にも応用が可能であることを確認しており，今後の臨床応用が期待される．
このように，著者らは大学病院薬剤部という臨床の立場から，遺伝子医薬品の安全性や効果，汎用性，多機能性，安定性などの重要性を痛感し，臨床への応用に耐えうる次世代型遺伝子ベクターの開発を行ってきた．この遺伝子ベクターは生体適合性の高いFig. 6. Transgene efficiencies of the various complexes in mice.
The complexes were injected intravenously
into mice. At 6 h after administration, mice
were sacrificed and each organ was dissected
to quantify luciferase activity. Each value
represents the mean±S.E. (n＝3–5). *: p＜0.05.
□ : non-coating and ■ : g-PGA-coating.

化合物を自己組織化することによって，安全性と効果を両立できる画期的なものである．これら化合物の組み合わせは無限に存在し，今後は臨床使用の容易なクリニカル DDS とも言うべき分野を育てたいと考えている．
最後に本稿で紹介した研究を行うに当たり，終始

DOTMA-DOPE complex は脾臓と肺で高い遺伝子発御懇篤なる御指導，御鞭撻を賜りました長崎大学病現効果が認められた．しかしながら，g-PGA 被膜型院薬剤部佐々木均教授に謹んで厚く御礼申し上げま

遺伝子ベクターは肺における遺伝子発現量が低値をす．さらに，実験の一部に御協力頂いた長崎大学大示した．カチオン性の遺伝子ベクターは静脈内投与

学院医歯薬学総合研究科治療薬剤学研究室員一同に後に，血液中で赤血球や血清アルブミンなどと凝集感謝致します．

し，肺を塞栓することで高い遺伝子発現効果を示す

引 用 文 献ことが知られている．g-PGA 被膜型遺伝子ベクター
は血液中で凝集せず，肺を塞栓しなかったために肺の遺伝子発現効果が減少したものと推察される．一方で，g-PGA 被膜型遺伝子ベクターは脾臓で高い遺伝子発現効果を示した．脾臓は樹状細胞やマクロファージなどの抗原提示細胞が豊富な臓器であることから，g-PGA 被膜型遺伝子ベクターは DNA ワクチンベクターとしての有用性が期待できる．
そこで，我々は g-PGA 被膜型遺伝子ベクターを癌ワクチンや感染症ワクチンへ応用し，既にその高い有用性を確認している．現在，詳細なメカニズムや臨床への応用に関して検討を進めている．
6．お わ り に
著者らは，様々なアニオン性化合物を用いて作製した遺伝子ベクターの有用性を追求し，製剤学的な安定性や遺伝子導入効果，安全性などの詳細な検討を行ってきた．この結果，g-PGA などの数種の特殊1081) T. Kurosaki, T. Kitahara, S. Fumoto, K. Nishida,J. Nakamura, T. Niidome, Y. Kodama, H. Nakagawa, H. To, H. Sasaki, Ternary complexes ofpDNA, polyethylenimine, and g-polyglutamic acidfor gene delivery systems, Biomaterials, 30,2846–2853 (2009).
2) T. Kurosaki, T. Kitahara, S. Kawakami, Y. Higuchi, A. Yamaguchi, H. Nakagawa, Y. Kodama,T. Hamamoto, M. Hashida, H. Sasaki, Gammapolyglutamic acid-coated vectors for effective andsafe gene therapy, J. Control. Release, 142, 404–410 (2010).
3) T. Kurosaki, T. Kitahara, S. Kawakami, K. Nishida, J. Nakamura, M. Teshima, H. Nakagawa, Y.
Kodama, H. To, H. Sasaki, The development of agene vector electrostatically assembled with apolysaccharide capsule, Biomaterials, 30, 4427–4434 (2009).
4) T. Kurosaki, R. Kishikawa, M. Matsumoto, Y. Kodama, T. Hamamoto, H. To, T. Niidome, K.
Takayama, T. Kitahara, H. Sasaki, Pulmonary
gene delivery of hybrid vector, lipopolyplex containing N-lauroylsarcosine, via the systemicroute, J. Control. Release, 136, 213–219 (2009).

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