2016

肺癌における ALK 免疫染⾊
プラクティカルガイド
第 0 版（2016 年 8 ⽉ 20 ⽇作成）
⽇本肺癌学会・⽇本病理学会合同 ALK-IHC 精度管理ワーキンググループ

序⽂
昨今、腫瘍形成に関わる遺伝⼦変異、すなわち Driver 遺伝⼦が報告され、それら遺伝⼦変異に対する阻害剤が開発、そして実臨床で使⽤されるようになってきました。肺癌では、2002 年にゲフィチニブ（イレッサ）の発売後、EGFR 遺伝⼦変異の有無により効果に差があることが Lynch ら、Paez ら、Pao らによって 2004 年に同時に報告され、EML4-ALK 融合遺伝⼦が Soda, Mano らによって 2007 年に報告されています。
ALK 融合遺伝⼦は、EGFR 遺伝⼦変異とは相互排他的な Driver 遺伝⼦であり、肺原発の腺癌に約 3~5% に認められ、若年者、⾮喫煙者や組織学的に印環細胞癌や篩状構造を呈する腺癌などに多いという報告がなされています。
ALK 融合遺伝⼦陽性肺癌に対する治療薬としては第⼀世代の ALK 阻害剤であるク
リゾチニブ（ザーコリ）が、⽶国では 2011 年に、⽇本では 2012 年に承認されています。
その後、第 2 世代 ALK 阻害剤として 2014 年にセリチニブ（ザイカディア）が⽶国で、アレクチニブ（アレセンサ）が⽇本で承認されました。 2016 年３⽉には⽇本でも遅ればせながらセリチニブ（ジカディア）が承認されました。これらの ALK 融合遺伝⼦陽性肺癌に対する治療薬は融合遺伝⼦の有無によって、治療効果に差が⾒られることが知られていて、適正に取り扱うためには免疫染⾊、FISH、RT­PCR 法などでの遺伝⼦変異検査などを⾏うことがほぼ必須条件となっています。特に ALK 融合遺伝⼦の証明には各阻害剤に応
じて免疫染⾊の抗体や検出法、FISH 法などコンパニオン診断として細かく決められ、保険適⽤されているもの、されていないものと分れています。そのため、現場では分かりにくくなっていることがあり、診断、治療の妨げにもなってしまいます。このプラクティカルガイドは、⽇常臨
床に役⽴つ知識や最新の情報などを盛り込み、病理医が適正な遺伝⼦診断を⾏う為の⼀助になるように作成しました。⽇々の診療に役⽴てていただけることを祈念します。
2016 年 8 ⽉
⽇本肺癌学会・⽇本病理学会合同ALK-IHC精度管理ワーキンググループ

1

⽬次
略語表

3

Q1: ALK の IHC を⾏うのはどのような組織型の肺癌が対象となりますか︖

4

Q2: EGFR 遺伝⼦変異のある症例について ALK IHC を⾏うべきですか︖

6

Q3: ALK の IHC を⾏わなくてもいい場合がありますか︖

8

Q4: ALK IHC を⾏うのに適切な検体採取材料は何ですか︖

10

Q5︓腫瘍のどの部分に ALK IHC を⾏えば良いですか︖

12

Q6︓過去に ALK の検索が⾏われている症例で再発が認められた場合にもう⼀度 ALK IHCを⾏う必要がありますか︖

14

Q7: 標本作製で技術的に注意する点を教えてください。

15

Q8: 検査の時期はいつがよいのでしょうか?

18

Q9: ALK IHC および FISH を実施するうえで注意する点を教えてください。

20

Q10: ALK IHC はどのように⾏えばいいですか︖

22

Q11: ALK IHC の評価⽅法を教えてください。

28

Q12: ALK IHC の精度管理はどのようにしたらいいのでしょうか︖

32

Q13: ALK IHC の保険点数はどのように考えればいいか教えて下さい。

35

執筆者(敬称略) （五⼗⾳順）

43

2

・略語表
【検体採取】
EBUS: Endobronchial ultrasound︓超⾳波気管⽀鏡
TBB︓ Transbronchial biopsy︓経気管⽀⽣検
TBLB︓Transbronchial lung biopsy︓経気管⽀肺⽣検
TBNA︓Transbronchial needle aspiration︓経気管⽀針⽣検EUS︓ Endoscopic ultrasonography︓超⾳波内視鏡
FNA︓ Fine needle aspiration︓穿刺吸引細胞診【技術/検査】
IHC ︓Immunohistochemistry︓免疫組織化学
ICC: Immunocytochemistry︓免疫細胞化学
FISH︓Fluorescence in situ hybridization︓蛍光 in situ ハイブリダイゼーション
FFPE︓Formalin-fixed paraffin- embedded︓ホルマリン固定パラフィン包埋【薬事】
CoDx︓Companion diagnostics︓コンパニオン診断法
IVD︓ in vitro diagnostics︓体外診断⽤医薬品
LDT︓ Laboratory developed test ︓薬事未承認（⾃家開発）検査法【治療】
PD︓ Progressive disease︓進⾏
SD︓ Stable disease︓不変

3

Q1: ALK の IHC を⾏うのはどのような組織型の肺癌が対象となりますか︖
回答:
腺癌および腺癌成分を含む症例が ALK 融合遺伝⼦の検索対象となります。扁平上⽪癌、⼩細胞癌および腺癌としての形質を⽰さない⼤細胞癌は除外対象と考えられます
が、⽣検検体のみの場合には診断精度の問題があるため、腺癌以外でも検索を考慮すべきです。
解説
ALK 融合遺伝⼦陽性肺癌は腺癌以外の組織型における頻度は極めて低いと考えられ 1,2)、腺癌および微量でも腺癌成分を含む症例での検索が推奨されます。しかしながらこれは⼗分な組織を確保できるような検体、例えば⼿術検体などで腫瘍全体がほぼ組織学的検索がなされた場合に限定されます。⽣検検体のみで腺癌成分の有無に関して確定することは不可能であるため、腺癌と診断されなくても ALK 検査を考慮してもよいと考えます。
その理由として肺癌における組織亜型の決定が特に低分化癌である場合に難しいことや採取された検体の質に⼤きく影響を受けることが挙げられます。ALK 融合遺伝⼦陽性肺癌は特徴的な臨床背景（若年、軽度・⾮喫煙者）3)を有する群で⾼頻度にみられ、これらの条件に合致する場合には積極的な検索が勧められますが、臨床的な特徴をもって検査を⾏うのではなく、腺癌の可能性が否定出来ないすべての症例について⾏うべきであるとされています。実際、70 才以上、喫煙者であっても陽性となることがありますので留意すべきです。また、扁平上⽪癌での ALK 融合遺伝⼦陽性症例 4,5)および治療有効例が報告されていますが 6)、⽣検材料での診断に基づく報告が主で、腺扁平上⽪癌の部分像を⾒ている可能性が考慮されます。そのため、⽣検や細胞診標本では、組織型に関係なく免疫染⾊を施⾏すべきとされています
⼀⽅で、 扁平上⽪癌の⼿術例を⽤いて IHC に確定された群での解析では 2.5%（40例中 1 例）に ALK FISH 陽性例が認められたという報告もあり 、⼿術標本であっても臨床的特徴に基づいて検査を施⾏することが勧められています。7,8,9)(図)

4

図

5

Q2: EGFR 遺伝⼦変異のある症例について ALK IHC を⾏うべきですか︖
回答:
基本的には⾏う必要はありません。
同⼀腫瘍内で EGFR 遺伝⼦変異陽性, ALK 融合遺伝⼦陽性肺癌が共存することはまれとされています。
ただし、多発病変の場合は、EGFR 遺伝⼦変異陽性肺癌と ALK 融合遺伝⼦陽性肺癌が共存することがあるので、注意が必要です。
解説
現在のところ、EGFR 遺伝⼦変異 と EML4-ALK 融合遺伝⼦は相互排他的と⾔われており 10-13)、費⽤対効果を考えても、EGFR 遺伝⼦変異が認められる症例に対して
ALK IHC を⾏う必要は無いと考えられています。(表)。
ただし、近年、EGFR 遺伝⼦変異を持つ症例に EML4-ALK 融合遺伝⼦を有する症例が 1.7%~13.6%ほど認められると報告されています。13,14)しかし、これらの 症例では衝突癌やアッセイの誤差との意⾒もあり、いずれの変異も同⼀腫瘍で⽣じるかについては多くの研究者は疑問視しています。実際にあったとしてもきわめて例外的と考えられています。
また、 実臨床において、EML4-ALK 融合遺伝⼦の有無で EGFR-TKI の治療効果に差は無いという報告もあり 15)、そのような意味でも EGFR 遺伝⼦変異症例に ALK の IHC を⾏う必要性は低いと考えられます。
しかしながら、両⽅の変異を有する症例で、EGFR-TKI の治療後に ALK inhibitor が著効した例も報告されていますので 16)、EGFR 遺伝⼦変異を有していても EGFR-TKI で SDや PD の場合などは ALK IHC 検査を⾏う意味があると考えられます。
表 愛知県がんセンターで EGFR,ALK を検索した結果のまとめ
ALK 再構成あり

ALK 再構成なし

EGFR 変異あり

２＊

８９０

EGFR 変異なし

１１１

１７５２

6

* 1 例は ALK 陽性肺癌に対して治療後に EGFR Ex19 ⽋失が観察された。もう１例
は ALK 陽性肺癌であるが、EGFR 変異は⾮典型的な G724D で EGFR-TKI の治療効果については予測不能であった。

7

Q3: ALK の IHC を⾏わなくてもいい場合がありますか︖
回答:
⼿術検体で腺癌の成分を完全に除外できる場合や ALK の治療を⾏わない/⾏えない
場合、EGFR 遺伝⼦変異が陽性である時は ALK IHC などの検査を⾏わない場合があります。
解説
ALK 融合遺伝⼦陽性肺癌は若年発⽣傾向があり 17, 18)、⾮喫煙 19)、⼥性に多いとの報告がありますが、喫煙男性にも⼀定頻度で融合遺伝⼦が認められることからは臨床像での絞り込みは⾏うべきではないとされています。
また、組織像に関しては ALK 陽性肺癌のほとんど全てが腺癌であり、EGFR 遺伝⼦変
異とは排他的であるので、EGFR 遺伝⼦変異陰性の腺癌は必ず ALK IHC が⾏われるべきです。頻度の⾼い EGFR 遺伝⼦変異も検査すべきですが、初診例では EGFR 遺伝⼦
変異検査と同時に⾏うことも許容されます。（症例の選択について、Q1 参照）
ALK IHC は、融合遺伝⼦を有する症例はびまん性に陽性となることが知られています。
20, 21)

また、ALK 融合遺伝⼦陽性の腺扁平上⽪癌の扁平上⽪癌成分でも、ALK IHC は陽性を⽰すので、原則的に初回⽣検で検体量が⼗分であれば、⽣検陰性症例を⼿術検体で再評価することは推奨されません。22)（Q5 参照）
１）⼿術予定がある場合に⽣検検体で ALK-IHC を⾏う必要性に関して⼿術が⾏われる場合は⼿術検体で施⾏する⽅が確実な結果が得られるとする報告もありますが、20) ⼿術材料に脱灰操作が加わっている場合などは、⽣検 組織で⾏う必要があります。複数の腫瘍組織がある場合には、キャンサーボードなどの多種職メン
バーでどの組織を使うべきか討議することが勧められています。
２）ALK検査でIHCではなく、FISHやRT-PCRが先⾏された場合のIHCの必要性に関して
ALK FISH陽性例、特に陽性細胞数カウントが15-20%の症例では真のALK転座が認められない症例(それらは免疫染⾊が陰性)の報告があり、23）また、陽性シグナル数が多くても5'⽋損例では次世代シークエンサーの結果ALK転座が証明されなかった症例の報告がありますので注意が必要です。24）

8

RT-PCR で陽性であれば科学的な⾯からは FISH や IHC を施⾏する必要性は存在しないと考えられますが、治療薬剤との関連からは FISH または免疫染⾊を施⾏する必要性があります。RT-PCR 法では、抽出した核酸を⽤いる検査であるため、確実に検体中に腫瘍細胞が⼊っているか確認する必要があります。また、肺腫瘍においても稀ながらも新規転座パートナーが同定されてきていますので、24,25） RT-PCR が陰性の場合では ALK 再構成が陰性である根拠とはなりませんので未知の転座パートナーでも陽性となる FISH または免疫染⾊を可能な限り施⾏すべきです。

9

Q4: ALK IHC を⾏うのに適切な検体採取材料は何ですか︖
回答
検体の種類は組織検体、液状検体、穿刺吸引細胞診検体のいずれでも可能とされています。重要な点は材料が適切に処理されて取り扱われるべきこと、および検体が⼗分な腫瘍細胞を有することです。
解説
ALK IHC は FFPE 組織ブロック、ALK ICC は液状検体及び穿刺吸引細胞診検体のセルブロックあるいは塗抹標本(スメア)のような種々の異なる腫瘍検体で技術的には検査可能とされています（保険適⽤に関しては Q13 参照）。ただし、検査可能とは⾔ってもviable な腫瘍細胞集塊が作製された標本内にごく少数でも存在している必要があります。
判定に必要な腫瘍細胞の数があれば、⽣検検体でも検査は可能です。しかしながら現時
点では IHC における必要組織量、厳密に⾔うと必要腫瘍細胞数は、FISH(最低 50 個)と異なり決まっていません。アーチファクトを除外し、粘液産⽣等腺癌細胞であることや、逆に偽陽性が⽣じうる神経内分泌形態でないことを認識するためには(Q5 参照)、細胞形態のみならず組織構築をある程度判定できる腫瘍細胞数を確保することが望ましいと考えられますが、逆に IHC の利点として腫瘍細胞数がごく少数であっても適切に作製された標本であれば正しく判定できる可能性があります。しかし、現時点で明確な規定はありません。
細胞診検体は材料の種別関係なくセルブロックが作製されていれば ICC は可能です。
（図１）セルブロックは組織標本と同様に扱えることができ、バイオマーカー解析と同じプロトコールを適⽤できるため、セルブロック作製が推奨されます。ただし、液状化細胞診では使⽤するシステムによって固定液や固定⽅法が異なるため、ガラス塗抹標本、セルブロック、何れの場合にも推奨されるプロトコールはありません。各検査室で抗原賦活化などの染⾊条件を事前に検討しておく必要があります。（図２）同じ細胞診検体でも、喀痰や洗浄液などのある⼀定の変性が加わる材料には同様に注意が必要です。全ての診断作業が完了するまで胸⽔などの保存可能な検体は保存しておくことが望まれます。
参考⽂献 8,26,27

10

図１

少数の腫瘍細胞と思われる細胞に ALK 陽性を⽰し、ALK 再構成の存在が強く⽰唆される。少数の細胞であっても陽性所⾒が得られる点は IHC 法の利点であるが、 神経内分泌腫瘍などでも偽陽性を⽰すことを考えると FISH 法での確認が必要となる。本例ではFISH においても陽性であった。
図２

液状細胞診検体を⽤いた ALK ICC.背景の炎症細胞は染⾊されないが、腫瘍細胞の胞体に強く染⾊される。本例では FISH においても陽性であった。

11

Q5︓腫瘍のどの部分に ALK IHC を⾏えば良いですか︖
回答︓
壊死部分や固定不良領域以外の腫瘍部分を⽤いてください。複数の病変が存在し、それぞれが独⽴した腫瘍であると考えられる場合は、それぞれについて ALK-IHC を⾏うことが望ましいと考えられます。
しかし、類似した組織像をとる場合は、同⼀のがん細胞に由来している可能性が⾼いので、より保存状態が良い⽅で⾏ってください。
解説︓
理論的には、適切な⽅法を⽤いれば、融合遺伝⼦がある場合は、蛋⽩はほとんどの腫
瘍細胞の細胞質に発現します。しかし、壊死部分や固定不良領域では、偽陽性、偽陰性となる場合があるので、⼿術材料などの複数ブロックが存在する場合には、形態学的に最も状態のよいブロックを選んで染⾊することが勧められます。
複数病変があり、肺内転移の可能性が⾼い場合は、より保存状態のよいほう、採取時期の新しいほうで実施することが推奨されます。別々の腫瘍である可能性が想定される場
合は、それぞれの腫瘍に実施したほうがよいと考えられます。
⼿術の際に郭清されたリンパ節に転移があれば ALK IHC に⽤いることも可能ですが、原発巣と転移巣で遺伝⼦変異に差が⾒られることも⼤腸癌の KRAS や乳がんの HER2 で報告されていますので、理由がなければ原発巣を⽤いたほうがより確実です。さらに、腫瘍内での ALK 遺伝⼦転座の不均⼀性が報告されていますので、腫瘍の全体が把握できる⼿術
検体で原発巣を⽤いることが推奨されます。
（註１）神経内分泌分化⽰す場合は、融合遺伝⼦が無くても、全⻑型の ALK を発現することがあります。この場合には、陽性細胞は>80%ですが、checker board pattern（陰性・陽性細胞が頻繁に隣り合う）を⽰すと報告されています。
（註２）印環細胞などのように⾼度粘液産⽣細胞は、染⾊されるべき細胞質の領域が少なく、融合遺伝⼦があっても染⾊陽性となりにくいので、偽陰性になる可能性があり、陰性と⾒えても判定には注意が必要です。ニチレイの ALK ATLAS では、明瞭な陽性細胞が確認される場合には印環細胞を評価対象に含めない、という記載もあります。
参考⽂献 28-33

12図 クリゾチニブ治療後の S6 と S9 の腫瘍に対してのサルベージ⼿術

異なる組織型を⽰し、重複癌との鑑別を要したが、ALK IHC 陽性、ALK FISH で再構成の他、遺伝⼦増幅も観察され、クリゾチニフ耐性による⾁腫様変化と考えられます。

13

Q6︓過去に ALK の検索が⾏われている症例で再発が認められた場合にもう⼀度 ALKIHC を⾏う必要がありますか︖
回答︓
⼿術後、放射線後、殺細胞性の抗がん剤の治療を⾏った後の再発では ALK IHC の再検査は必要ありません。ただし、重複癌が疑われる場合は ALK IHC を⾏う必要があります。
解説
再発後の再⽣検に関しては議論のあるところで、EGFR 遺伝⼦変異については⾊々と調べられており、⼀致率も様々です。しかしながら、再発巣が特に⾻や脳であった場合など、再⽣検そのもので遺伝⼦変異を検索するのに⼗分な量の検体を採取することは時としてリスクを伴います。また、肺⾮⼩細胞癌における原発巣と転移巣との遺伝⼦変異を⽐較することを⽬的とした研究では、同じ recurrent 変異が出現していた割合(⼀致率)は 94％と報告されており 34)、⼤腸癌における同様の研究でも 90％の⼀致率とされています 35)。さらに現在まで ALK 陰性症例からの陽転化の報告もないことから、再発時の再⽣検及び ALKIHC の 検索は必要ないものと考えられます。ただし、重複癌が疑われる場合は ALK
IHC を⾏う必要があります(複数病変の取り扱い⽅については、Q5 を参照)
ALK 耐性についての検討で、ALK IHC を施⾏するかどうかは議論が分かれています。
現在までに ALK 阻害剤を使⽤した場合、当初は感受性であっても EGFR-TKI と同様に耐性が獲得されることが知られています。耐性の獲得機構としては、ALK 優位な変異以外にも EGFR や KRAS など ALK とは別の伝達経路活性化によるも のがあり、ALK キナーセ
領域に変異が⾒られた症例が 36%、ALK 遺伝⼦の増幅に よるものが 18%、EGFR
変異が 9%、KRAS 変異が 18%との報告があります。37)
ALK 優位な変異としては、ゲートキーパー変異といわれる ALK キナーゼ領域の変異や ALK
遺伝⼦の増幅などが知られており、特にクリゾチニブ（ザーコリ）耐性機構として、L1196Mのゲートキーパー変異が最も頻度が⾼いといわれています。これらのクリゾチニブ（ザーコリ）
耐性変異型 ALK にも有効な第 2 世代 ALK 阻害薬(アレクチニブ（アレセンサ）やセリチ
ニブ（ジカディア）など)が開発されており、耐性の機序別に⼆次治療の戦略がとられるようになる可能性も あります。しかしながら、ALK-IHC は ALK 耐性遺伝⼦や遺伝⼦増幅、別の伝達経路活性化があっても、染⾊態度には特に変化がないため、耐性の診断には使⽤できません。

14

Q7: 標本作製で技術的に注意する点を教えてください。
回答︓10%中性緩衝ホルマリンを⽤い、6-48 時間固定します。固定後の標本作製は通常の⼯程で問題ありませんが、薄切した標本は速やかに ALK 検査（IHC, FISH など）を⾏うことが勧められます。
⽣検検体では微⼩な材料から多数の切⽚を作る必要があり、薄切後での腫瘍細胞量の変化に注意が必要です。
解説︓
固定液は 10%中性緩衝ホルマリンが推奨されています。ホルマリン濃度の違いが検査実施上問題となることは多くはありませんが、標準化という観点からは、10%中性緩衝ホル
マリンの使⽤が薦められます。⾮緩衝ホルマリンや酸性固定液は DNA の断⽚化、タンパクの抗原性の劣化をもたらす可能性があり、避けるべきです。またグリオキサールなどの代替ホルマリンについても、核酸やエピトープへの影響について検証が必要です。
⾻⽣検などで脱灰が必要な場合は、酸性脱灰液（ギ酸、塩酸、プランクリュクロ等）あるいは重⾦属塩類を基盤とした脱灰液は避け、中性付近で脱灰できる EDTA を使⽤することが推奨されています。ただし、その場合、脱灰に時間がかかる点も考慮に⼊れなければなりません。
固定液もさることながら、材料採取後の速やかな固定が極めて重要です。この過程は臨床医に委ねられている場合も多く、実際に固定までにどの程度の時間がかかっているか不明
なことも多いと思われます。信頼のおける検査結果を出すために、病理検査室としても⼗分な関与が必要です。転移巣などの⼿術材料ですぐに固定できない場合は、乾燥を防ぐため、
⽣理的⾷塩⽔で湿らせたガーゼなどに包み冷蔵庫で保管すべきです。固定までの時間が各種バイオマーカーの検出に及ぼす影響に関して乳癌で多数の報告がありますが、肺癌
ALK 検査における検討はほとんどありません。しかしながら、その固定までの時間は１時間以内が理想的とされています。検体採取から固定までに時間がかかる場合は、乾燥を防ぐ
ため、⽣理的⾷塩⽔で湿らせたガーゼなどに包み冷蔵庫で保管しないといけませんが、少な
くとも⾦曜⽇採取の検体を⽉曜⽇まで冷蔵庫に保管するのは避けるべきです。
固定時間は，乳癌の HER2 検査のガイドラインにあわせ，6 時間以上、48 時間以内とされています。しかしながら，⼩さな⽣検材料では 6-12 時間，⼤きな⼿術材料は 8-18
時間が最もよいとされており，固定時間による ALK 検査への影響を各施設で評価することも推奨されています。
15

標本作製の際、固定後の標本作製は、⽔洗い、エタノールでの脱⽔、キシレンでの脱アルコール・透徹、パラフィン浸透後のパラフィン包埋ブロックの作製、といった通常の⼯程で問題ありません。しかしながら、薄切後の切⽚は、タンパクの変性、DNA の断⽚化の観点から、
少なくとも、６週以内に検査を⾏うことが推奨されています。それでも、余剰となった薄切切
⽚は、パラフィンなどで被覆して酸化を防ぎ、涼しく、乾燥した暗所での保存がよいでしょう。
後⽇、新たな遺伝⼦検査が求められた場合、材料（腫瘍量）が⼗分であれば、新たな薄切切⽚から遺伝⼦検査を⾏った⽅が良好な結果が得られる可能性が⾼まります。
ALK の検査は進⾏肺癌患者から採取される材料で⾏うことが多く、材料は微⼩な⽣検
材料や細胞診材料のみであることがほとんどです。従って、その微⼩な切⽚中に検査に⼗分な腫瘍成分が含まれているかが ALK の検査を⾏う上で重要な鍵となります。採取材料中の腫瘍細胞の数に関しては、IHC を⾏う上での規定はありませんが、FISH では最低５０個の腫瘍細胞が必要です。⼗分量の腫瘍細胞が含まれない場合は、積極的に材料の再提出（再検）を促すか、ALK 検査を進めても偽陰性になる可能性を臨床医に伝えることが必要です。
切⽚としては、診断のための H&E 染⾊に加え、原発か否か、あるいは腺癌であるか否かを判断するために IHC を⾏うことが推奨されています。⽣検検体に関して、IHC ⽤の切⽚をそのたびに薄切していくと貴重な材料（腫瘍細胞）が失われてしまう可能性があり、最初から腺癌判定⽤の IHC ⽤切⽚（最低４枚）に加え、EGFR 検査⽤の切⽚、ALK 検査⽤の切⽚を作製しておくことで、再薄切の際の無駄が省略できます。
症状の進⾏が早い肺癌に関しては⼀刻も早く治療に⼊ることが求められ、同時に検査を⾏う場合も多いと思われます。少なくとも ALK IHC には１枚の切⽚、ALK FISH には１枚の切⽚が必要ですが、作業⼯程での検査の失敗（再検査）を含め ALK ⽤だけで複数枚の準備が必要です。
細胞診検体でセルブロックを作製し、ALK ICC を⾏う場合があります。細胞診材料から作製されるセルブロックは、遠⼼分離により収集した細胞成分を凝固・固化させ、組織⽚と同様にパラフィンブロックとする⽅法です。⽣検材料と同様に IHC や遺伝⼦検査を⾏うことが可能で、⾮常に有⽤な材料です。しかも、材料採取法の技術⾰新（EBUS, EUS など）
により、より侵襲の少ない FNA での材料提出が多くなり、その有⽤性が増しています。
セルブロックの標本作製には、遠⼼分離細胞収集法後の、細胞凝固・固化法に関していくつかの⽅法（コロジオンバック法、グルコマンナン法、アルギン酸ナトリウム法、クライオバイア
ル法、アガロース法など）があります。ただし上記のように複数の⽅法がありますが、IHC や
遺伝⼦検査にとってどの⽅法が最も有⽤であるかの標準化は進んでいません。特に凝固剤を添加した場合の遺伝⼦検査への影響などはさらに検証が必要と思われ、⾃施設にて⾏う
16場合は、相応の精度管理が必要です。
参考⽂献 26, 38-40

表 セルブロック作成⽅法
⽅法

コロジオンバックライオバイアグ法

ル法

アガロース法

遠⼼分離細胞収集法
試薬など

10% コ ロ ジ オ

クライオバイア

ン液︓コロジオル容器

アルギン酸ナト

グルコマンナン

リウム法

法

細胞凝固・固化法
アガロース

ン ＋ エ ー テ
ル︓アルコール

アルギン酸ナトアルコール脱リウム＋塩化カ

⽔、グルコマンルシウム

ナン添加、メタ
ノール深沈

（1:1）

図 セルブロック、アルギン酸ナトリウム法を⽤いた ALK ICC

腫瘍細胞胞体に ALK が強く染⾊される。印環細胞癌も細い範囲で染⾊が確認される。
本例では FISH においても陽性であった。

17

Q8: 検査の時期はいつがよいのでしょうか?
回答︓
ALK 検査は、ALK 阻害剤を⽤いる標的治療実施前に⾏うべきです。
解説︓
ALK 検査は研究的に全例実施する施設以外での実施時期は、1)診断時、2)(⼀次)
治療後再発時、が想定されます。いすれも功利があり、実施施設の状況によるため推奨される時期はないのが現状です。実際には、ALK 陽性と診断された後の治療⽅針に応じて各施設・各症例で⾄適な時期を選定するべきと考えられます。また、複数の施設を経由する症例(診断と治療が異なる施設で⾏われる場合)には、限られた検体(特に微⼩検体)で正確な診断を⾏うための有効利⽤と医療経済の両⾯から、検索⽅法・時期・検索結果の共有⽅法を慎重かつ適切に判断する必要があり、病理相互および病理と臨床の緊密な連携が求められます。また、キャンサーボードな度での症例ごとの検討が推奨されています。
EGFR, ALK, KRAS の変異は相互排他的で、ALK 陽性の頻度は低いため、EGFR の結果がでてから ALK 検査を⾏うほうが効率的です。しかし、EGFR 遺伝⼦検査が偽陽性であることもあるので、注意が必要です。
ALK 検査を臨床病理像が特徴的な症例(⾮喫煙、若年者、粘液産⽣篩状・腺房状腺癌)に絞って検索すると費⽤対効果⽐が⾼くなりますが、特徴的所⾒のない ALK 肺癌
も存在するので、注意が必要です。 症例・検体の選定および検査品質管理については、
別項⽬（Q1-5,12）を参照してください。
1)診断時に実施する場合
利点: 転院などで試料が消失するなどの可能性なく ALK 変異情報を知ることができるため、個別化医療を最適条件で実施することができます。 また、再発時に治療⽅針判断が迅速に⾏えます。
⽋点: 全例実施する場合に、ALK 陽性例の頻度が低いため⾮効率的です。ALK 検査費⽤の負担が⼤きくなります。
附記:症例・検体の選定については、別項⽬（Q1-5）を参照してください。
2)⼀次治療後、再発時
利点: 費⽤対効果⽐が⾼くなります。

18

⽋点: 検査にやや時間がかかるため、緊急で治療選択を決めねばならない場合は、 ALKIHC のみで治療が開始されることもありえます。
附記:初発腫瘍と再発腫瘍のどちらで検索するべきか、については別項⽬（Q5,6）を参照してください。

参考⽂献 4019

Q9: ALK IHC および FISH を実施するうえで注意する点を教えてください。
回答:
ALK IHC では⾼感度の免疫染⾊法が必要とされ、偽陰性例や偽陽性例を防ぐための精度管理が重要です。FISH 法は⾼価な検査法であり、感度･特異度の⾯でスクリーニング検査としては不適と指摘されています。
解説︓
ALK IHC、FISH の施⾏に当たっては以下のように考えられます。
IHC では⻑所︓①安価である、②⽐較的簡便な⼿技であり、⼀般病理診断施設で実施
可能、③確実に腫瘍細胞についての評価が可能、④少量の⽣検組織でも基本的には可能、などが挙げられます。従って、スクリーニング検査に適しています。
短所︓肺癌における ALK 融合遺伝⼦タンパクの発現は微量であり、通常の染⾊法/発⾊法では検出が困難です。そのため、⾼感度の免疫染⾊法が必要とされ、偽陰性例や偽陽性例を防ぐための精度管理が重要です（Q12 参照）。
FISH は⾼価な検査法であり、感度･特異度の⾯でスクリーニング検査としては不適と指摘されています。従って、まずは⾼感度 IHC によりスクリーニングを⾏い、その後 FISH により確認を⾏うことが推奨されます。
⼀般的には、FISH と⾼感度 ALK IHC の結果は⾼い相関率を⽰します（95％以上）。
従って、⼗分な精度管理の下で施⾏された免疫染⾊で確実な陰性例では FISH は不要であろうとする⾒解が⼀般的です。しかし、稀に免疫染⾊陰性、FISH 陽性の症例も存在することから、陽性・陰性の微妙な症例や臨床病理学的に ALK 肺癌が疑われる症例では
FISH による追加検討が望ましいとされます。
臨床病理学的に ALK 融合遺伝⼦陽性肺癌が疑われる症例（具体例としては、40 歳
以下の症例、および病理学的に（粘液産⽣を伴う cribriform pattern を呈する腺癌、
印環細胞癌、TTF-1 陽性の粘液産⽣腺癌など）同腫瘍が疑われる場合は、FISH による追加検討が望ましいです。
現時点で本邦において、クリゾチニブ（ザーコリ ）を使⽤する場合には、ALK 免疫染⾊
陽性の場合に FISH による確認が、アレクチニブ（アレセンサ）を使⽤する場合には、免疫染⾊（ニチレイ ヒストファイン ALK iAEP キット）を使⽤することが原則とされています。
しかしながら、ALK 融合遺伝⼦陽性肺癌患者の中には、進⾏が速く早急な治療が必要

20

と判断される患者も含まれています。このような患者に対しては、ALK IHC 偽陽性の可能性を患者・家族に⼗分説明の上、FISH の検査結果を待たずに ALK 阻害剤を投与することも⼀つの選択肢となりえます。その際、⼗分な精度管理がなされた免疫染⾊法であることを確認し、FISH 検査のオーダーと後⽇の結果確認が必要です。
なお、⽶国 FDA では FISH 法である VYSIS ALK Break Apart FISH Probe Kit に
よる CoDx に加えて、最近 Ventana 社の⾼感度 IHC 法（clone D5F3）で ALK 遺伝⼦転座陽性の診断に基づきクリゾチニブ(ザーコリ)を適⽤することが認可されました。ヨーロッパではクリゾチニブ適⽤における ALK 陽性の判定法は IHC、FISH いずれとも特定されていません。
参考⽂献 1,8,21

21

Q10: ALK IHC はどのように⾏えばいいですか︖
回答
ALK IHC は ALK 阻害剤に対応するコンパニオン診断（CoDx）を⾏うことが原則となります。アレクチニブ(アレセンサ)に対応した IHC には，薬事承認された検出キットの使⽤が求められています。⼀⽅クリゾチニブ（ザーコリ）に対応した IHC 検査では，薬事未承認の検出⽅法を使⽤することになり，特に院内実施にあたっては注意が必要になります．検体数の少ない場合には、外注検査も選択肢にあがります。
解説
肺癌の ALK IHC に関する基本的な認識
未分化⼤細胞型リンパ腫（ALCL）の診断において，⻑く ALK IHC 検査が⾏われてきましたが，ALCL とは異なり，肺癌における ALK 融合タンパクの発現レベルは低く，そのため使⽤可能な⼀次抗体（クローン）や検出システムは，⾼感度検出に適したものを使⽤しなければなりません．また ALCL とは異なり，肺癌の ALK IHC 検査は，コンパニオ
ン診断（CoDx︓特定の医薬品の治療効果等を予測するために⾏なわれるバイオマーカー検査）として実施されるものですので，投与対象患者層別を要する治療薬と対応関係にある体外診断⽤医薬品（IVD）承認を得た検出キット（CoDx 薬）の使⽤が原則となります．
●ALK IHC で推奨される検出⽅法1) 標準化/最適化されている⽅法
このような原則は，⽇常病理診断業務を複雑化させていますが，現時点ではこれに則った運⽤が推奨されます。41)アレクチニブ(アレセンサ)に対応した IHC には，IVD 承認されたヒストファイン ALK iAEP キット（ニチレイ社）の使⽤が求められ，また所定点数（2700 点）に準じて保険算定する場合には，IVD 承認を得た検出キット（CoDx 薬）の使⽤が必須となります．⼀⽅，クリゾチニブ（ザーコリ）に対応した IHC 検査では，
IVD 承認された CoDx 薬はありませんので，未承認の検出⽅法を使⽤することになります(Q9,13 参照)．国内外における CoDx 薬の臨床開発状況 42,43)，ALK-IHC ワーキン
ググループで⾏った調査研究の結果 44)を踏まえ，下表の標準化/最適化された検出⽅法の使⽤が現時点では推奨されます（但し，IVD 承認を取得した CoDx 薬が市販されるまでの暫定的な運⽤となります）．ALK IHC で使⽤される⾼感度の検出法は，リンカー法とタイラミド法の 2 つに⼤別されます．両者の判定結果は⾼い⼀致性を⽰しますが 44)，こ22

れらを⽤いた ALK IHC の染⾊性には，やや差異が認められ，リンカー法に⽐べ，タイラミド法では，染⾊強度はやや強く，染⾊態度はより顆粒状を呈します（下図．詳細は
Q11）．
表 1 クリゾチニブの使⽤が考慮される場合に推奨される ALK IHC の検出⽅法
製造販売元

ニチレイ

（メーカー）

バイオサイエンス社

ALK IHC キット名
製造販売元でのヒストファイン ALK
iAEP キット*

ロシュ/ベンタナ社

ライカ
バイオシステムズ社

ALK（D5F3）
OptiView DAB―

ユニバーサルキット

◎

◎

○

5A4

D5F3

5A4

Prediluted

Prediluted

1:50 倍***

⾼感度

iAEP

OptiView

検出法(リンカー法)(タイラミド法) **プラットフォーム

ヒストステイナー*

Benchmark

抗原賦活処理機Heat Pro III 使⽤

プラットフォーム⼀体

プラットフォーム⼀体器が推奨（処理液は型（処理液は型（処理液はおよび処理液キット試薬）

CC1）

ER2）

本邦ではアレクチニ

本邦では未承認．

ブのみ．

海外ではクリゾチニブ

海外では未承認．

のみ．****

標準化/最適化
⼀次抗体

CoDx 薬としてのIVD 承認状況

BOND Polymer
Refine (リンカー
法)**
BOND III，
BOND MAX

国内外で未承認．

*:

⾃動染⾊⽤以外にも⽤⼿法⽤キットも IVD 承認されている．

**:

本検出法は ALK 以外の項⽬で IVD 承認されている．

***: 製造販売元が提⽰している希釈倍率条件．⼀次抗体は医療機関側で希釈して使⽤するため，注意が必要となる．
****: 厳密には，国内で使⽤可能なキットは海外 IVD 承認品とはことなる．

23

図 上記 3 法を⽤いた染⾊性の⽐較
写真左︓ニチレイバイオサイエンス社（リンカー法），中央︓ロシュ/ベンタナ社（タイラミド法），右︓ライカバイオシステムズ社（リンカー法）．ALK-IHC 精度管理プログラム（検討フェーズⅠ）で⽤いられたスパイラル組織マイクロアレイ標本における ALK IHC 染⾊の結果．

2) Home-brew 法の使⽤と注意点
クリゾチニブ（ザーコリ）に対応した IHC 検査の場合，表 1 の検出⽅法はいずれも単⼀メーカーの試薬・機器で構成された検出⽅法ですが，これら以外を使⽤する場合は，複数のメーカーの試薬を組み合わせて使⽤することになります（いわゆる home-brew法）．そのため医療機関の責任のもと，CoDx としての使⽤に耐えうる⼗分な染⾊条件の検討が⾏われる必要があります．染⾊条件の検討では，ALK 陽性および陰性細胞株から作製された市販の FFPE コントロールスライド（Q12 参照）および ALK 陽性および陰性が確認された FFPE 検体を⽤いて，表 1 に挙げた推奨検出⽅法との結果の⼀致性（同等性）を確認する必要があります（ちなみに IVD の薬事申請では，通常陽性および陰性検体，それぞれ 50 例以上での⽐較検討が求められます）．また検討データについては保管が望まれます．
Home-brew 法での実施を検討する場合，市販の⼀次抗体（抗体クローン）は数多くありますが，国内外で IVD として使⽤実績のある 5A4 や D5F3 といった抗体クローンの選択・使⽤が望ましいと考えられます 8,26)．これら研究⽤試薬は，IVD 承認試薬のよ
うな特定の基準に適合した製造・品質管理は⾏われていない場合が多く，ロット間差等に問題がより⽣じやすい可能性がありますので注意が必要です．ロットが変わる場合は，必ず新旧ロット間での⽐較検討を，上記の市販 FFPE コントロールスライドや FFPE 検体を⽤24

いて⾏う必要があり，乖離がある場合は，希釈倍率の再設定や販売元への確認が必要となります．
⼀⽅，⾼感度の検出⽅法については，上表の検出試薬以外に，病理診断現場で広く普及しているダコ社 EnVision FLEX+ (リンカー法）が挙げられます．抗原賦活処
理法については，いずれの抗体クローンおよび⾼感度検出法を⽤いる場合においても，
Tris-EDTA を主体とする⾼ pH（pH9 付近）の抗原賦活処理液が使⽤されていますので，染⾊条件検討時の第⼀選択となります．

25

表 2 Home-brew 法のうち使⽤に耐えうると判断される検出⽅法
アブカム社 5A4 (1:40 倍*) (43,45)，
⼀次抗体*

ライカバイオシステムズ社 5A4（1:30 倍希釈*）(46,47)
CST 社 D5F3（1:200 倍希釈*）(46,48)

⾼感度検出法
プラットフォーム
抗原賦活処理機器
および処理液*:ダコ社 EnVision FLEX+（リンカー法）**
ダコ社 Autostainer Link48，Autostainer/Autostainer
Plus
ダコ社 PTLink 使⽤が推奨（処理液は TRS High pH 試薬）

記載は⽬安となる希釈倍率であり，医療機関において⼗分な検討が⾏われる必要がある．⼀次抗体反応では特殊な反応条件（4℃・⼀晩など）の使⽤は適さ
ない．

**:

本検出法（但し LINKER 試薬は除く）は ALK 以外の項⽬で IVD 承認されている．

染⾊プログラム例 (ワーキンググループ委員の施設より)
A 施設
1. 脱パラ2. 抗原賦活化 (PT-Link High-Buffer x20min)
3. ⼀次抗体(5A4、Santa Cruz Biotech, sc-57624, 50 倍希釈 x30 min)
4. DAKO Flex+ Mouse Linker (K8021) x 15min
5. DAKO Envision Flex (Polymer, K8000) x 15min
6. 内因性パーオキシダーゼブロック x5 min
7. DAB 発⾊ 10min
B 施設
1. 脱パラ2. 抗原賦活化 (High-Buffer 98℃ 40min)
3. ⼀次抗体(5A4、Thermo, MA5-11460, 20 倍希釈 x60 min)
4. DAKO Flex+ Mouse Linker (K8021) x 15min
5. DAKO Envision Flex (Polymer, K8000) x 30min

26

6. 内因性パーオキシダーゼブロック x5 min
7. DAB 発⾊ 10min3) 検査センターへの外注
クリゾチニブ（ザーコリ）に対応した IHC 検査を上記 home-brew 法で院内実施する場
合，条件検討や検査精度維持に割く医療機関側の⼈的負担は少なくありません．こうした負担の受容が困難な医療機関では，検査センター（正式には登録衛⽣検査所）の利⽤が薦められます．現在，検査センターでは，アレクチニブ（アレセンサ）の IHC
CoDx 薬（ヒストファイン ALK iAEP キット）を⽤いた検査以外にも､検査センターが独⾃に開発した薬事未承認検査法（⽶国 CLIA 認定施設で⾏われている laboratory
developed test [LDT]法に相当する⽅法）による検査も⼀部実施されています．薬事
未承認検査法で採⽤されている検出⽅法は⾮公開ですが，⼤⼿検査センターで実施された LDT IHC と FISH の結果の⼀致率は 98%だったことが，ファイザー社によるクリゾチ
ニブ（ザーコリ）保険償還前無償提供プログラムの当時（2012 年 4 ⽉〜5 ⽉）の提供
データで⽰されています。49)27

Q11: ALK IHC の評価⽅法を教えてください。
回答︓
ALK IHC は細胞質内に染⾊性が認められるため、検体組織の腫瘍細胞における細胞質の陽性所⾒を検索します。染⾊対照として、あらかじめ ALK 融合タンパク発現の有無が確認された組織・細胞標本（コントロール標本、対照標本）を検体組織と同時に染⾊し、これらの染⾊対照における反応性が妥当であることを確認した上で検体組織の染⾊評価を⾏うことが重要です。
解説︓
ALK IHC は細胞質内に染⾊されるため、検体組織の腫瘍細胞における細胞質の陽性所⾒を検索します。正常肺組織における ALK タンパクの発現はないため、検体組織中
で内部コントロールを得ることができません。ALK IHC の実施においては、染⾊対照として、あらかじめ ALK タンパク発現の有無が確認された組織・細胞標本を検体組織と同時に染⾊し、これらの染⾊対照における反応性が妥当であることを確認した上で検体組織の染⾊評価を⾏うことが重要です。さらに、検体標本で⼀次抗体の代わりに陰性コントロール試薬（使⽤する⼀次抗体と同種のイムノグロブリン等）を反応させた陰性対照スライドにて、検体標本におけるアーチファクト（⾮特異反応）の有無を確認するのが望ましいとされます。
⽇本肺癌学会がまとめた「肺癌患者における ALK 融合遺伝⼦検査の⼿引き（第 2.1版）」では、ALK 融合遺伝⼦検査として、まず IHC でのスクリーニングを⾏い、ALK IHC
陽性となった症例について FISH を実施し ALK 阻害剤適⽤可否を判断するアルゴリズムが⽰されています。
クリゾチニブ（ザーコリ）適応患者識別のための ALK IHC として、ロシュ社「VENTANAALK (D5F3) CDx Assay」が全⾃動免疫染⾊組織化学法コンパニオン診断薬としての
⽶国 FDA 承認、中国 CFDA および欧州 CE-IVD を取得していますが、本邦における体外診断薬は未だないため、当該⽬的の検査には研究⽤試薬の ALK 抗体と⾼感度検出法を組み合わせた IHC が⽤いられているのが現状です。使⽤する⼀次抗体や染⾊法により得られる染⾊性は異なるため、ALK IHC 導⼊時の事前検討において⾃施設の染⾊性を⼗分に把握した上で、ALK 融合遺伝⼦検査のスクリーニングという⽬的において⼀律の判定基準を設定し、それに基づいた ALK IHC 陽性、陰性の判定を⾏うことが望まれます。判
断基準 を⾄適化さえしておけば、ほとんどの症例で明瞭に陽性と陰性を区別することができる。また、ALK-IHC 精度管理プログラム(Q12 参照)に参加し、その妥当性を確認するのもよい⽅法でしょう。
28

⼀⽅、アレクチニブ（アレセンサ）適応患者識別のための ALK IHC としては、ニチレイ
社「ヒストファイン ALK iAEP®キット」がコンパニオン診断薬の承認を得ており、染⾊結果の判定においては iScore [50]に基づいた判定基準が⽤いられています（表 1 および図 1）。
判定における注意点やスコアごとの適応判定については添付⽂書を参照してください。
表 1 「ヒストファイン ALK iAEP®キット」における ALK 融合タンパクのスコアリングおよび判定⽅法（添付⽂書より転載）
スコア

適合条件

判定

3

陽性腫瘍細胞率＞80%陽性

280%≧陽性腫瘍細胞率＞50%境界域

150%≧陽性腫瘍細胞率＞0%

境界域

0

陽性腫瘍細胞なし

陰性図 1 「ヒストファイン ALK iAEP®キット」染⾊例（添付⽂書より転載）*: 「ヒストファイン ALK iAEP®キット」はアレクチニブ塩酸塩適応患者識別のためのコンパ
ニオン診断薬であり、当該⽬的以外に使⽤する場合は保険償還されません。

29

検体の種類による留意点
特に⽣検組織や細胞診検体から作製されたセルブロックを⽤いた検査の場合は、検体標
本中に評価すべき腫瘍細胞が含まれているか否かを確認した上で評価を⾏います。また、通常の免疫染⾊と同様に固定条件による染⾊の不均⼀性や微少検体処理に起因するアーチファクトにも留意してください。

染⾊性評価における留意点
通常の免疫染⾊より⾼感度な検出系が⽤いられることもあり、組織中の粘液や肺胞マクロファージの細胞質等への着⾊（バックグラウンド染⾊）が認められる場合があります。また、使⽤する⼀次抗体や染⾊キット特有の⾮特異反応の有無についても、添付⽂書等の記載を確認した上で評価を⾏ってください。
さらに、⾼感度な ALK IHC では全⻑ ALK タンパクも検出されることを知っておく必要があります。正常の神経系細胞は全⻑ ALK タンパクを発現しているため ALK IHC にて陽性となります。また、肺癌で神経内分泌系への分化を⽰す腫瘍などにおいて、全⻑ ALK タンパクの⽣理的発現により陽性反応が認められる場合があります。その多くは不均⼀な陽性所⾒を呈するとされ、このような症例は FISH 等で ALK 融合遺伝⼦の有無を確認することが望まれます。51)また、印環細胞など粘液を多く含有する細胞では、粘液空胞により細胞質の陽性所⾒が確認しづらい場合があるため、染⾊性評価には留意が必要です（図 2）。
52-54)

図 2 粘液産⽣細胞における ALK 染⾊例 （陰性のように⾒える）
30

細胞質が粘液成分で圧排され、ALK 陽性所⾒がほとんど確認できない。

31

Q12: ALK IHC の精度管理はどのようにしたらいいのでしょうか︖
回答︓
Q7, Q11 で回答された ALK 染⾊の推奨⽅法に従うことと共に，IHC の基本とも⾔えるコントロールを⽴てることが望ましい。
解説︓
ALK IHC は神経細胞を除く殆どの正常組織には陰性ですので，⽣検材料や⼿術材
料に含まれる正常肺組織は必然的に陰性コントロールとなります。
陽性コントロールに関しましては，ALK 肺癌の組織⽚が⼊⼿可能であればそれを⽤いれば良いのですが，出来れば偽陰性の可能性がある印環細胞が主成分でない症例をいれることで、弱い染⾊態度についても確認ができます。⼊⼿困難の 場合は、正常組織での発現をみることで代⽤が可能です。ALK を正常で発現する正常組織は主として神経組織で、中枢神経組織や腸管神経節などを⽤いることができます。ただし、中枢神経組織は ALK1
抗体を⽤いた⼀般的な免疫組織化学染⾊法で陽性となるので、肺癌⽤の ALK 染⾊⽅法(リンカー法)を⽤いると過 度な陽性像を⽰す場合があります(図 2)。腸管神経節細胞
ではそのような過度 な陽性像はない代わりに、⼩さな組織⽚では神経節が含まれない可能性があり ます(図 3)。また、 ニチレイ社のヒストファイン ALK コントロールスライド（図 4）の他、CST 社などからコントロールスライドが発売されています。
また、ALK-IHC ワーキンググループでは、外部精度管理を⾏っており、そのプログラムに積極的に参加することで、染⾊技術、評価の客観的評価が得られるようになり、より良い
ALK 染⾊の実施に有⽤です。興味があれば、以下に連絡してみてください。
ALK-IHC 精度管理ワーキンググループ
東⽇本事務局

⻄⽇本事務局

坂下信悟（さかしたしんご）酒井康弘（さかいやすひろ）

筑波⼤学医学医療系診断病理学〒305-8575 茨城県つくば市天王台 1-1-1
TEL 029-853-3865(病理部)sakashngo@hotmail.com

神⼾⼤学医学部附属病院病理診断科〒650-0017 兵庫県神⼾市中央区楠町 7-5-2
TEL O78-382-6473(直通)msakai@med.kobe-u.ac.jp

図1
32

図２

33

図3

図４

参考⽂献 55-59

34

Q13: ALK IHC の保険点数はどのように考えればいいか教えて下さい。

回答:
ALK 融合遺伝⼦陽性の切除不能な進⾏・再発⾮⼩細胞肺癌に保険適⽤されます。
株式会社ニチレイバイオサイエンス社のヒストファイン ALK iAEP キットを⽤いた場合は、アレクチニブ（アレセンサ）の⾮⼩細胞肺癌患への適応を判定するための補助に⽤いた場合に限り、診療報酬 2,700 点が請求できます。よって、現時点ではアレクチニブ（アレセンサ）以外の ALK 阻害剤（クリゾチニブ（ザーコリ）など）に投与するため上記キットを⽤いた場合は、通常の免疫染⾊病理組織標本作製として取り扱われるため、診療報酬 400 点しか請求できません。また、それ以外の場合は全て通常の免疫染⾊病理組
織標本作製として取り扱われるため、診療報酬 400 点しか請求できません。
解説︓
⾮⼩細胞肺癌に対して、アレクチニブ（アレセンサ）の投与の適応を判断することを⽬的として、リンカー試薬を⽤いた IHC 法（ヒストファイン ALK iAEP キット）により病理標本作製を⾏った場合に、当該薬剤の投与⽅針の決定までの間に、1 回を限度として、保険適⽤に算定（2,700 点）されます。また、それ以外の⽅法で IHC を⾏った場合は、⼀臓器に１回のみ算定（400 点）することができます。
EGFR 遺伝⼦検査と ALK 遺伝⼦検査を同時にした場合は、両者同時の保険請求はできません。従って、同⽇の検査は原則的に実施できません。しかし、EGFR 遺伝⼦検査陰性症例に ALK 検査を施⾏した場合は、ALK 検査の保険請求は可能です。
IHC で保険適⽤されるのは原則として病理組織標本です。セルブロックに関しては細胞診の項⽬に記載されています。この場合悪性中⽪腫を疑う患者に対して、穿刺吸引などにより採取した検体を⽤いてセルブロック法により標本を作製した場合に 860 点が算定されます。セルブロックが細胞診とみなされた場合は通常、IHC での保険は適応されません。しかし、現在の IHC は加算ではなく個別請求が可能になっています。セルブロック法で 860 点、IHC400 点、免疫染⾊の判定による組織診断料 450 点が算定される場合もあります。このようにセルブロックの IHC が保険適応されるか否かは、各都道府県で異なる場合もあるため、各都道府県の厚⽣局医療課や監査課あるいは事務所などに確認して下さい。
特異的阻害剤であるアレクチニブ（アレセンサ）を使⽤する場合は、ニチレイバイオサイエ
ンス株式会社のヒストファイン ALK iAEP キットを⽤いた IHC 法が、原則的にはコンパニオン
診断薬と位置づけられています。この⽅法は従来の IHC 法と⽐較してブリッジ試薬とペルオ
35

キシダーゼ標識エンパワー試薬を⽤いて多くの酵素（ペルオキシダーゼ）を抗原部位に動員することで⾼感度化した⽅法です。⼀⽅、クリゾチニブ（ザーコリ）の場合は、コンパニオ
Rン診断薬は、アボット社の Vysis○ ALK Break Apart FISH プローブキットを⽤いた FISH
法のみであったため、推奨される IHC は特にないのが現状です。しかし、2015 年 6 ⽉に⽶
国では、ベンタナ・メディカル・システムズ社の Ventana ALK (D5F3) CDx Assay が FDA
より承認されました。⽇本での保険収載に関して現時点（2016 年 3 ⽉）では明らかになっていませんが、⽇本肺癌学会は厚⽣労働⼤⾂に対し早期の製造販売承認の要望書を提出しています。
肺癌を ALK の免疫染⾊でスクリーニングし陽性であった場合は、FISH あるいは RT-PCR
検査を施⾏し（通常は FISH を施⾏）、２つ以上の検査が陽性であることの確認が望まRしいとされています。ただし、アボット社の Vysis○ ALK Break Apart FISH プローブキット
を⽤いた FISH 法は保険適⽤（6,520 点）されていますが、RT-PCR については保険適応されていません。
最後に肺癌での病理診断の実例をお⽰しします。気管⽀鏡検査などで採取される微⼩な⽣検組織で腺癌と診断可能な場合は、EGFR と ALK-IHC(400 点⼜は 2,700 点の算定)でのスクリーニングが推奨されます。しかし、腺癌と扁平上⽪癌の鑑別が困難な場合には、IHC（例︓TTF-1, p40）により腺癌と診断後に EGFR と ALK-IHC(400 点⼜は2,700 点の算定)でのスクリーニングが推奨されています。腺癌と扁平上⽪癌の鑑別が困難な場合に 4 種加算（例︓TTF-1, Napsin A, p40, CK5/6）を使⽤した場合は、400 点+加算 1,600 点（計 2,000 点）の算定が可能ですが（医学的根拠を診療報
酬明細書の摘要欄に詳細に記載する必要あり）、その後に悪性腫瘍遺伝⼦検査のEGFR 遺伝⼦検査（リアルタイム PCR 法あるいはそれ以外）⼜は ALK 融合遺伝⼦標本作製（FISH）を算定している場合は、4 種加算を算定できないので注意が必要です。
参考⽂献 6036

参考⽂献
1. Inamura K, et al. EML4-ALK fusion is linked to histologicalcharacteristics in a subset of lung cancers. J Thorac Oncol. 2008; 3:
13-17.
2. Boland JM, et al. Anaplastic lymphoma kinase immunoreactivity
correlates with ALK gene rearrangement and transcriptional
up-regulation in non-small cell lung carcinomas. Hum Pathol. 2009;40: 1152-1158.
3. Kwak EL, et al. Anaplastic lymphoma kinase inhibition in non-small-celllung cancer. N Engl J Med. 2010; 363 :1693-1703.
4. Wang J, et al. Detection of ALK protein expression in lung squamouscell carcinomas by immunohistochemistry. J. Exp. Clin. Cancer Res.
2014; 33: 109.
5. Caliò A, et al. ALK/EML4 fusion gene may be found in pure squamous
carcinoma of the lung. J. Thorac. Oncol. 2014; 9: 729–732.
6. Vergne F, et al. ALK-rearranged squamous cell lung carcinoma
responding to crizotinib: A missing link in the field of non-small celllung cancer? Lung Cancer. 2016; 91: 67-69.
7. ⽇本肺癌学会 肺癌患者における EGFR 遺伝⼦変異検査の⼿引き 第 2.1 版
https://www.haigan.gr.jp/uploads/photos/810.pdf
8. ⽇本肺癌学会、肺癌患者における ALK 融合遺伝⼦検査の⼿引き 第 2.1 版
2014 https://www.haigan.gr.jp/uploads/photos/810.pdf
9.

NCCN

ガ イ ド ラ イ ン

⽇ 本 語 版

⾮ ⼩ 細 胞 肺 が ん

http://www.tri-kobe.org/nccn/guideline/lung/index.html
10. Soda M, et al. Identification of the transforming EML4-ALK fusion
gene in nonsmall cell lung cancer. Nature 2007; 448: 561–566.
11. Shaw AT, et al. Clinical features and outcome of patients with non̶small cell lung cancer who harbor EML4-ALK. J Clin Oncol 2009; 27:
4247–4253.
12. Horn L, et al. EML4-ALK: honing in on a new target in non-small-celllung cancer. J Clin Oncol 2009;27:4232–4235
13. Gainor JF, et al. ALK rearrangements are mutually exclusive with37

mutations in EGFR or KRAS:an Analysis of 1683 patients with
non-small cell-lung cancer. Clin Cancer Res 2013;19:4273–4281.
14.

Ulivi P, et al, Nonsquamous, Non-Small-Cell Lung Cancer Patients
Who Carry a Double Mutation of EGFR, EML4-ALK or KRAS:
Frequency, Clinical-Pathological Characteristics, and Response to
Therapy. Clin Lung Cancer. 2015 Dec 1. [Epub ahead of print]

15. Yang JJ, et al. Lung cancers with concomitant EGFR mutations and
ALK rearrangements: diverse responses to EGFR-TKI and crizotinibin relation to diverse receptors phosphorylation. Clin Cancer Res.
2014; 20:1383-1392.
16. Chen X, et al. A case of lung adenocarcinoma harboring exon 19 EGFR
deletion and EML4-ALK fusion gene, Lung Cancer, 2013; 81: 308–
310
17. Pan Y, et al. ALK, ROS1 and RET fusions in 1139 lungadenocarcinomas: a comprehensive study of common and fusion
pattern-specific clinicopathologic, histologic and cytologic features.
Lung Cancer 2014;84:121-126.
18. Wang WY, et al. Immunohistochemical screening and fluorescence insitu hybridization confirmation of ALK translocation in lungadenocarcinoma

and

its

clinicopathologicalsignificance:asingle-center large-scale investigation of Chinese patients. Hum
Pathol 2014;45: 1414-1422.
19. Calio A, et al. ALK/EML4 fusion gene may be found in pure squamous
carcinoma of the lung. J Thorac Oncol 2014;9:729-732.
20. Abe H, et al. Heterogeneity of anaplastic lymphoma kinase generearrangement in non-small-cell lung carcinomas: a comparative
study between small biopsy and excision samples. J Thorac Oncol
2015;10 :800-805.
21.

YoshidaA,

ALK-rearranged

et

al.

Comprehensive

lungcarcinomas.

histologicAmJanalysis
Surgof

Pathol2011;35:1226-1234.
22.

Natasha BL et al. Molecular Testing for Selection of Patients With
Lung Cancer for Epidermal Growth Factor Receptor and Anaplastic
38

Lymphoma Kinase Tyrosine Kinase Inhibitors: American Society ofClinicalOncology

Endorsement

of

the

CollegeofAmericanPathologists/International Association for the Study of Lung
Cancer/Association for Molecular Pathology GuidelineJ Clin Oncol
2014:32:3673-3679.
23. Ilie MI. et al. Discrepancies between FISH and immunohistochemistry
for assessment of the ALK status are associated with ALK'borderline'-positive rearrangements or a high copy number: a potential
major issue for anti-ALK therapeutic strategies. Ann Oncol 2015; 26:
238-244.
24. Gao X, Sholl LM, Nishino M, Heng JC, Janne PA, Oxnard GR. ClinicalImplications of Variant ALK FISH Rearrangement Patterns. J Thorac Oncol
2015; 10: 1648-1652.
25. Shan L, Jiang P, Xu F, Zhang W, Guo L, Wu J, et al. BIRC6-ALK, a Novel
Fusion Gene in ALK Break-Apart FISH-Negative Lung Adenocarcinoma,
Responds
to Crizotinib. J Thorac Oncol 2015; 10: e37-39.
26. IASLC, IASLC Atlas of ALK testing in lung cancer IASLC Press 2013
27. Koss LG et al.

Koss' Diagnostic Cytology and Its Histopathologic

Bases, 5th ed. Lippincott Williams & Wilkins 2005
28. ALK ATLAS. 第 2 版. Nichirei Biosciences INC. Tokyo, pp. 1-26, 2014.
29. ⽵内賢吾. 腫瘍のコンパニオン診断. ALK. 病理と臨床 臨時増刊号 32:379-383, 2014
30. Takamochi K, et al. A rational diagnostic algorithm for theidentification of ALK rearrangement in lung cancer: A comprehensive
study of surgically treated Japanese patients. PLOS ONE 2013; 8:1-9
31. Tekeuchi K, Interpretation of anti-ALK immunohistochemistry results.
J Thorac Oncol 2013; 8: e67-e68
32. Takeuchi K, et al. KIF5B-ALK, a novel fusion oncokinase identified by
an immunohistochemistry-based diagnostic system for ALK-positive
lung cancer. Clin Cancer Res 2009; 15: 3143-3149

3933. Zito Marino F, et al. Intratumor Heterogeneity of
ALK-Rearrangements and Homogeneity of EGFR-Mutations in Mixed
Lung Adenocarcinoma.
PLoS One. 2015 ;10 :e0139264. doi: 10.1371/journal.pone.0139264.
eCollection 2015.
34.

Vignot

S,

et

al.

Next-Generation

Sequencing

RevealsHigh

Concordance of Recurrent Somatic Alterations Between Primary
Tumor and Metastasis From Patients With Non-small Cell Lung
Cancer. J. Clin Oncol. 2013; 31:2167-2172
35. Vakiani E, et al. Comparative genomic analysis of primary versus
metastatic colorectal carcinomas. J Clin Oncol. 2012; 30:2956-2962
36. Kim H, et al. Overview of clinicopathologic features of ALK-rearranged
lung adenocarcinoma and current diagnostic testing for ALK
rearrangement. Transl Lung Cancer Res. 2015; 4:149-155.
37. Robert C, et al. Mechanisms of Resistance to Crizotinib in Patients withALK Gene Rearranged Non-Small Cell Lung Cancer. Clin Cancer Res.
2012 ; 18: 1472-1482
38. Travis WD, et al. WHO Classification of Tumours of Lung, Pleura,
Thymus & Heart, 4th ed. World Health Organization 2015 WHOclassification
39. Wolff AC, et al. Recommendations for human epidermal growth factor
receptor 2 testing in breast cancer: American Society of ClinicalOncology/College of American Pathologists clinical practice guideline
update. Arch Pathol Lab Med. 2014;13: 241-256
40. Lindeman NI, et al. Molecular testing guideline for selection of lungcancer patients for EGFR and ALK tyrosine kinase inhibitors:
guideline from the College of American Pathologists, International
Association for the Study of Lung Cancer, and Association for
Molecular Pathology.J Thorac Oncol. 2013; 8: 823-859
41．⼤林 千穂，他．肺癌における遺伝⼦変異検査のガイドライン．病理と臨床
2016; 34: 249-255.
42. Takeuchi K, et al. Prospective and clinical validation of ALK
immunohistochemistry: results from the phase I/II study of alectinib
40

for ALK-positive lung cancer (AF-001JP study). Ann Oncol. 2016; 27:
185-92.
43. Nitta H, et al. New methods for ALK status diagnosis in non-small-celllung cancer: an improved ALK immunohistochemical assay and anew, Brightfield, dual ALK IHC-in situ hybridization assay. J Thorac
Oncol. 2013; 8 :1019-31.
44. ⽇本肺癌学会・⽇本病理学会合同 ALK-IHC 精度管理ワーキンググループ．EQA
プログラム報告書．準備中
45．Murakami Y, et al. A Screening Method for the ALK Fusion Gene in
NSCLC. Front Oncol. 2012; 2: 24.
46．Conklin CM, et al. Immunohistochemistry is a reliable screening toolfor identification of ALK rearrangement in non-small-cell lungcarcinoma and is antibody dependent. J Thorac Oncol. 2013;
8:45-51.
47 ． Lung Anaplastic Lymphoma Kinase (lu-ALK) Assessment Run45
2015.

Recommended

lu-ALK

protocols(Dako/mAb

5A4).

http://www.nordiqc.org/Run-45-B20-H8/Protocols/ALK_5A4_D_G
eneralModulerun45.pdf
48 ． Lung Anaplastic Lymphoma Kinase (lu-ALK) Assessment Run45
2015.

Recommended

lu-ALK

protocols

http://www.nordiqc.org/(Dako/mAb

D5F3).

Run-45-B20-H8/Protocols/

ALK_D5F3_D_GeneralModulerun4
49. ⽇本肺癌学会バイオマーカー委員会．ALK 遺伝⼦検査における FISH 法と⾼感度 IHC 法 に よ る 検 査 結 果 の 不 ⼀ 致 に つ い て の お 知 ら せ と 対 応 ． 2012
http://www.haigan.gr.jp/uploads/photos/519.pdf
50. ⽵内賢吾. ALK. 臨床検査. 57:271-6, 2013
51. Takeuchi K, Interpretation of anti-ALK immunohistochemistry results[letter]. J Thorac Oncol. 2013;8:e67-e68.
52. Rodig S, et al. Unique clinicopathologic features characterize
ALK-rearranged lung adenocarcinoma in the western population.
Clin Cancer Res. 2009; 15: 5216-5223.
53. Yoshida A, et al. Frequent ALK rearrangement and TTF-1/p63
co-expression

in

lung

adenocarcinoma

withsignet-ring

cell
41

component. Lung Cancer. 2011;72:309-315.
54.

Popat

S,

et

al.

ALK translocation

is associatedwith ALK

immunoreactivity and extensive signet-ring morphology in primarylung adenocarcinoma. Lung Cancer. 2012;75:300-305.
55. ⽵内賢吾．ALK．免疫組織化学 診断と治療選択の指針．病理と臨床 臨時増刊号 2014;32:379-383.
56.

ALK

iAEP

Kit

ATLAS,NICHIREIBIOSCIENCES

INC,

2014.

http://www.nichirei.co.jp/bio/products/pdf2/42707.pdf
57. Lung Anaplastic Lymphoma Kinase (lu-ALK) Assessment Run39 2013.
Nordicimmunohistochemical

qualitycontrol.

http://www.nordiqc.org/Run-39-B16-H4/Assessment/Run39_ALK.
pdf
58.

Ventana
http://www.uclad.com/newsletters/ALK-LUNG-IHC-INTERPRETATI
ON-GUIDE.pdf

59. VENTANA ALK (D5F3) CDx Assay Quick Reference Guide for
Non-Small

Cell

Lung

Carcinoma(NSCLC).

http://productlibrary.ventanamed.com/ventana_portal/OpenOverla
yServlet?launchIndex=1&objectId=790-4796101291100US
60. 厚⽣労働省 平成 28 年度診療報酬改定について
http://www.mhlw.go.jp/stf/seisakunitsuite/bunya/0000106421.html

42

担当者⼀覧
編集（敬称略）⼤林千穂

奈良県⽴医科⼤学病理診断学講座

⾕⽥部恭

愛知県がんセンター中央病院遺伝⼦病理診断部

南優⼦

国⽴病院機構茨城東病院胸部疾患・療育医療センター病理診断科

畑中豊

北海道⼤学病院コンパニオン診断研究部⾨元井紀⼦

国⽴がん研究センター中央病院病理・臨床検査科

執筆者(敬称略) （五⼗⾳順）
⽯井源⼀郎 国⽴がん研究センター東病院臨床開発センター臨床腫瘍病理分野
⽯川雄⼀

公益財団法⼈がん研究会がん研究所病理部

岡本賢三

北海道中央労災病院病理科

河原邦光

⼤阪府⽴呼吸器・アレルギー医療センター病理診断科

酒井康裕

神⼾⼤学医学部附属病院病理診断科

坂下信悟

筑波⼤学医学医療系 診断病理学⽥⼝健⼀

国⽴病院機構九州がんセンター統括診療部臨床検査科/病理診断科

武島幸男

広島⼤学⼤学院医⻭薬保健学研究院病理学研究室

蔦幸治

関⻄医科⼤学病態検査学講座

中⾕⾏雄

千葉⼤学⼤学院医学研究院診断病理学鍋島⼀樹

福岡⼤学医学部病理学講座・病理部

仁⽊利郎

⾃治医科⼤学統合病理学

⼆宮浩範

公益財団法⼈がん研究会がん研究所病理部

野⼝雅之

筑波⼤学医学医療系 診断病理学畑中豊

北海道⼤学病院コンパニオン診断研究部⾨

⽻場礼次

⾹川⼤学病理診断科

林雄⼀郎

慶應義塾⼤学病院病理診断部

廣島健三

東京⼥⼦医科⼤学⼋千代医療センター病理診断科

福岡順也

⻑崎⼤学病院病理診断科・病理部

松野吉宏

北海道⼤学病院病理診断科

元井紀⼦

国⽴がん研究センター中央病院病理・臨床検査科

吉澤明彦

京都⼤学医学部附属病院 病理診断科・病理部

43

謝辞
本プラクティカルガイドをまとめるにあたり、佐々⽊治⼀郎先⽣︓北⾥⼤学医学部臨床腫
瘍学、集学的がん診療センター、佐藤之俊先⽣︓北⾥⼤学医学部呼吸器外科、東⼭
聖彦先⽣︓地⽅独⽴⾏政法⼈⼤阪府⽴病院機構⼤阪府⽴成⼈病センター呼吸器外科、今岡由紀先⽣︓⻑崎⼤学病院病理診断科・病理部に多⼤なるご指導、ご助⾔をいただきまして、⼼より御礼申し上げます。

44