DROPLET 2024開催に向けて2022年11月，株式会社オンチップバイオテクノロジーズ様主催のもと，DROPLET2022が開催されました。
この度，その第２回目として，
ワークショップ「DROPLET2024」を開催する運びとなり，オーガナイザーの任をお引き受けしました。第１回開催の時は，ドロップレット技術を利用した微生物の探索・スクリーニングに関する内容が中心だったとお聞きしております。私事ながら，学位論文のテーマが，ゲルドロップレット内部での微生物増殖の解析であったこと，
また，
マイクロ流路を用いたドロップレットの生成とその応用を，20年以上研究テーマにしていたこともあり，
この分野の研究には強い関心を持って研究して参りました。
ドロップレット技術は直径~100μm程度の小さな液滴（反応容器）を１本のマイクロチューブの中に多数（~100万個）用意して，並列的に多数の反応・培養を行う技術です。スクリーニングやシングル解析などにおいて汎用性が高く，その技術適応の広がりには大きな可能性があります。
「 DROPLET2024」
では，微生物のみならず，無細胞反応，他の細胞への応用分野も加えて，これらの分野を代表される先生方にご講演頂く予定です。
今回のワークショップも，多くの方々が気軽に参加し，かつ双方向性の議論が闊達にできるような場となり，新しい知見の交換と，それによる新たなアイデアを生み出す研究者同士の交流の機会となるよう願っております。
多くの皆様のご参加をお待ちしております。

関 実

千葉大学 名誉教授【略歴】
2023年4月-現在
2020年7月-現在

千葉大学, 大学院工学研究院 (名誉教授)
国立研究開発法人新エネルギー・産業技術総合開発機構,「カーボンリサイクル実現を加速するバイオ由来製品生産技術の開発」
事業, プロジェクト・リーダー

2007年1月-2023年3月

千葉大学, 大学院 工学研究院, 教授

2017年4月-2021年3月

千葉大学, 理事（研究・産学連携担当）

2014年4月-2021年3月

千葉大学, 副学長（研究担当）

2015年4月-2017年3月

千葉大学, 工学研究科／工学部, 工学研究科長／工学部長

2012年4月-2015年3月

日本学術振興会, 学術システム研究センター, 専門研究員

2012年4月-2015年3月

文部科学省, 科学官（研究振興局）

2003年4月-2006年12月 大阪府立大学, 大学院工学研究科 物質・化学系専攻, 教授
1996年4月-2003年3月

東京大学, 大学院工学系研究科 化学生命工学専攻, 助教授

1994年3月-1996年3月

東京大学, 大学院工学系研究科 化学生命工学専攻, 講師

1988年3月-1994年2月

東京大学, 大学院工学系研究科化学工学専攻, 助手

1984年4月-1988年2月

三菱化成工業株式会社（現：三菱ケミカル）, 総合研究所（横浜）, 研究員【受賞】
2023年5月

学会賞, 化学とマイクロナノシステム学会

2023年3月

学会賞（池田亀三郎記念賞）, バイオプロセス革新のための工学的研究,
化学工学会

2017年3月
2012年3月

審査員 表彰, 日本学術振興会
研究賞（内藤雅喜記念賞）,
マイクロ流体システムにおける微量操作と分離法に関する研究, 化学工学会

2

2011年10月

YABEC Award, Asian Federation of Biotechnology

1997年9月

発酵と代謝研究奨励賞, バイオインダストリー協会

プログラムOpening Remark 関 実（千葉大学 名誉教授）

10：00～10：15

招待講演 IL-１
GMDによる高生産変異株の迅速・低コストなスクリーニング技術の開発
町田 雅之（金沢工業大学 ゲノム生物工学研究所）

10：15～10：45

5p

協賛企業講演 CP-１
10：45～11：05

プラズマによる新規育種方法とハイスループット全自動微生物スクリーニングシステムのご紹介
櫻井 美幸（アズワン株式会社 専門事業本部 ソリューション・デザイン部）

12p

Water-in-oilドロップレットを用いた新規バクテリオファージ獲得方法の開発
星野 美羽（東京大学大学院 新領域創成科学研究科）

6p

招待講演 IL-2
11：05～11：35

協賛企業講演 CP-2
分注装置・簡易ロボットを活用したコロニーピッカー自動化ソリューションのご紹介
友歳 剛（バイオテック株式会社 ラボ・オートメーション事業部）

11：35～11：55

13p

主催者企業講演 LS-1
12：10～12：30＜ランチタイム＞
オンチップ・バイオテクノロジーズ製品紹介

16p

株式会社オンチップ・バイオテクノロジーズ 営業部

Break Time

12：30～13：00

招待講演 IL-３
13：00～13：30

微生物・生体分子の機能的スクリーニング
飯塚 怜（東京大学大学院 理学系研究科生物科学専攻）

7p

協賛企業講演 CP-3
13：30～13：50

3D培養におけるAGMカプセルの有用性とその未来について
田代 孝之（東陽テクニカ ワン・テクノロジーズ・カンパニー シニアプロダクトコンサルタント）

14p

Droplet Generatorを用いたタンパク質液液相分離・凝集体形成観察
福山 真央（東北大学 多元物質科学研究所）

8p

招待講演 IL-4
13：50～14：20

主催企業講演 LS-2
14：20～14：40
14：40～15：20

Future technology オンチップ・バイオテクノロジーズ
株式会社オンチップ・バイオテクノロジーズ 開発部

16p

Break Time

招待講演 IL-5
15：20～15：50

Microencapsulated heat-inducible hepatic cells as bioartificial liver tissues
Silas Habimana (ハビマナ シラス)（九州大学 工学研究院 上平研究室）

9p

協賛企業講演 CP-4
小さく産んで大きく育てる: マイクロ流体デバイスによる微小液滴/エマルション生成製品とその拡張性
次田 友暁（株式会社ASICON 代表取締役）

15p

16：10～16：40

オープン型マイクロ流路によるシングルセルアレイ
鈴木 宏明（中央大学理工学部 精密機械工学科）

11p

16：40～16：50

Close Remark 小林 雅之（株式会社オンチップ・バイオテクノロジーズ 代表取締役社長）

17：00～19：00

懇親会

15：50～16：10

招待講演 IL-6

3

アクセス

4

IL-1
GMDによる高生産変異株の迅速・低コストなスクリーニング技術の開発
金沢工業大学 ゲノム生物工学研究所

町田 雅之
GMD（gel microdroplet）は、直径数十µmのアガロース等の微粒子で、微生物等の細胞を包埋して培養ができる。
これまでGMDを用いて、微生物によるタンパク
質生産向上変異株のスクリーニング技術の開発を行ったが、対象を化合物に広げることで、汎用・迅速なスクリーニング技術としての研究を進めている（図1）。
ここでは、主にβガラクトシダーゼ（β-Gal）分泌酵母の生産向上変異株のスクリーニン
グ、
スクリーニングの際に考慮すべき点などについて紹介する。
分泌型β-Galは、
糸状菌由来の遺伝子をプロモーターに接続し、酵母に導入して発現させた。
この生産細胞を培養してUV照射し、1個のGMDに1個程度以下になるように限界希釈したのち、レポーター細胞をと混合して包埋した。
レポーター細胞は、Galactoseの添加によってGFP（蛍光タンパク質）を発現する酵母であり、培地中のLactoseからβ-Gal活性によって生じたGalactoseを検出する。上記で作製したGMDを1晩培養し、オンチップバイオテクノロジーズ社のOn-chip Sortを用いて、約30万個のGMDから、高蛍光強度のものを100個程度ソートした。
これらをプレートに撒いてコロニーを作らせ、それぞれのコロニーから個別に培養してβ-Gal

図1

GMDスクリーニング

活性を測定したところ、1/2以上の確率で2倍以上の生産向上変異株が取得された。得られた高生産株数株をさらにUV照射して同様にソートしたところ、3倍以上に高生産化した変異株が取得された（図2）。
これらの高生産株は親株と同程度の生育性を示し、迅速で効率的な生産にも適していると考えられる。
また、UV照射を用いな
い自発的変異による生産向上株も取得された。現在は、
GABAやTryptophanなどの産業上重要なアミノ酸の生産向上変異株のスクリーニングも平行して行っている。
【略歴】
昭和56年3月
昭和61年3月
昭和61年4月
平成5年
平成5年～6年
平成13年
平成16年
平成20年
平成22年
平成11年
平成21年
平成30年
【受賞】
平成15年度
平成19年度

図2 ソートされた個々のGMDからランダムに選択して検証

東京大学農学部農芸化学科卒業
東京大学大学院農学系研究科農芸化学専攻博士課程終了、博士号取得
工業技術院化学技術研究所
工業技術院生命工学工業技術研究所（機構改革で所名変更）
独立行政法人製品評価技術基盤機構（併任）
独立行政法人産業技術総合研究所（独立行政法人化で所名変更）
同セルエンジニアリング研究部門グループリーダー
同イノベーション推進室総括企画主幹
同生物プロセス研究部門総括研究主幹
金沢工業大学客員教授
東京農工大学客員教授
金沢工業大学教授 ゲノム生物工学研究所所長、地方創生研究所兼任
日本醸造協会技術賞、「麹菌EST解析」（麹菌遺伝子解析推進委員会）
日本醸造学会特別賞、「麹菌ゲノム解析」（麹菌ゲノム解析委員会）

5

IL-2
Water-in-oilドロップレットを用いた新規バクテリオファージ獲得方法の開発
東京大学大学院

新領域創成科学研究科

星野 美羽
バクテリオファージ(以下、ファージと記す)は細菌に感染して増殖するウィルスであり、地球上にはおよそ1031粒
子存在すると推定されている。
この膨大な数のファージを効率よくスクリーニングすることはファージセラピーを含むファージの医学的、工学的応用に向けた大きな前進となる。
このような効率の良いファージスクリーニングを行うためには超ハイスループットな技術を用いる必要がある。
そこで本研究では、
w/oドロップレット技術を用いた
ファージスクリーニング法を開発することにした。
モデルファージと宿主細菌をw/oドロップレットの中で共培養することにより、ファージを増殖させた。
ファージを蛍光染色することでファージ増殖の有無を見分け、ファージ増殖が起こったと考えられるドロップレットを分取した。
これらのドロップレットを破壊し、中のファージをスケールアップ培養できたことから、実際にドロップレット内でファージ増殖が起こっていることも確認できた。

【略歴】
2021年3月

早稲田大学先進理工学部卒業、2021年4月~2023年3月 東京大学新領域創成科学研究科メディカル情報生命専攻修士課程、2023年4月~現在

6

東京大学新領域創成科学研究科メディカル情報生命専攻博士課程

IL-3
微生物・生体分子の機能的スクリーニング
東京大学大学院

理学系研究科生物科学専攻

飯塚 怜
1.微生物の機能的スクリーニング
環境中の99%以上の微生物は，現在の技術では培養が困難な微生物（難培養性微生物）とされている．難培養性微生物が産生する酵素は新たな酵素資源として非常に大きな可能性を秘めているが，培養に依存した探索ではそれらにアクセスすることは難しい．
そこで，油中水滴内で微生物の機能を一細胞単位で「見える化」
し，その酵素遺伝子を取得することを実現した．本講演では，発蛍光基質や油中水滴の変形能を利用して酵素活性を「見える化」
するアプローチの成果を紹介する．
2.生体分子の機能的スクリーニング
In vitro compartmentalization（IVC）法は，微小空間内に1種類の遺伝子型とそれに対応する表現型を共存させる進化分子工学的手法である．我々はビーズディスプレイ型のIVC法を開発し，機能性生体分子の効率的な創出・改変を実現した．本講演では，
ビーズディスプレイ型のIVC法を利用した新規蛍光RNAアプタマーの創出事例を紹介する．

【経歴】
2020年4月 - 現在
2016年2月 - 現在

東京大学, 大学院理学系研究科 生物科学専攻, 助教
公益財団法人川崎市産業振興財団, ナノ医療イノベーションセンター,
客員研究員
2012年11月 - 2020年3月 東京大学, 大学院薬学系研究科, 助教
2009年3月 - 2012年10月 東京大学, 大学院薬学系研究科, 特任助教
2006年4月 - 2009年2月
独立行政法人日本学術振興会, 特別研究員（PD）
2005年5月 - 2006年3月
東京農工大学, 大学院工学教育部 生命工学専攻, 特任助手
2004年10月 - 2005年4月 東京農工大学, 大学院工学教育部 生命工学専攻, 産学官連携研究員【学歴３】
2002年4月 - 2004年9月
東京農工大学, 大学院工学教育部, 博士後期課程 生命工学専攻
2001年4月 - 2002年3月
東京農工大学, 大学院工学研究科, 博士前期課程 生命工学専攻
1997年4月 - 2001年3月
東京農工大学, 工学部, 生命工学科【受賞９】
2019年9月
2019年度奨励賞, 日本薬学会関東支部
2018年11月
平成30年度酵素工学奨励賞, 酵素工学研究会
2018年9月
オムロン賞, TECH PLANTER 第5回バイオテックグランプリ
酵素探索プロジェクト
2018年9月
2018年度奨励賞, 日本バイオイメージング学会
2017年8月
星野賞 研究奨励賞, 第30回バイオメディカル分析科学シンポジウム
2016年12月
2015年3月
2014年4月
2008年11月【論文５】（BMAS2017）2016年度コスモ・バイオ学術論文賞, コスモ・バイオ株式会社
エンバイオ賞, 第21回リバネス研究費
オンチップ・バイオテクノロジーズ賞, 第17回リバネス研究費
研究奨励, 極限環境微生物学会

7

IL-4
Droplet Generatorを用いたタンパク質液液相分離・凝集体形成観察
東北大学

多元物質科学研究所

福山 真央
タンパク質凝集体、特に線維状凝集体であるアミロイド線維は、アルツハイマー病やパーキンソン病など多くの疾患発症メカニズムに関連していることが知られている。
アミロイド線維形成は、一般的に核形成依存過程（nucleation-dependent process）で記述される。
この過程ではアミロイド核形成がアミロイド線維の成長に比べて非常に遅く、核形成がアミロイド線維形成の律速過程であると考えられている。近年、多くのアミロイド前駆タンパク質が細胞内で液-液相分離により濃縮相を形成することが報告されており、アミロイド核形成が濃縮相中で起こるという経路が有力だと考えられ始めた。濃縮相からのアミロイド核生成の定量的な解析は、疾患発症メカ
ニズムの理解や、アミロイド形成阻害剤開発など、多くの観点において重要であると考えられる。本発表では、
マイ
クロ水滴を用いてサイズを制御した濃縮相を形成し、アミロイドの核生成を1イベントレベルで検出する手法について報告する。本手法を用いることで、アミロイドの核生成速度の定量が可能になった。今後、濃縮相中のアミロイ
ド核生成の分子論的理解や、創薬スクリーニング等への応用を目指す。

【略歴】
2014年3月

東京大学大学院工学系研究科 応用化学専攻 博士課程修了

2015年3月 - 2016年12月 京都工芸繊維大学, 大学戦略推進機構系, 助教
2015年10月 - 2020年3月 科学技術振興機構, さきがけ研究員（兼任）
2017年1月 - 2021年8月

東北大学, 多元物質科学研究所, 助教

2021年9月 - 2023年11月 東北大学, 多元物質科学研究所, 講師
2023年12月 - 現在

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東北大学, 多元物質科学研究所, 准教授

IL-5
Microencapsulated heat-inducible hepatic cells as bioartificial
liver tissues
Habimana Silas1、Kitano Hiroyuki1、Wulandari Diah Anggraini2、Wakabayashi Rie2、Kawabe Yoshinori1、Kamiya Noriho2 、Kamihira Masamichi1 †1Dep. Chem. Eng., Fac. Eng., Kyushu U., 744 Motooka, Nishi-ku, Fukuoka 819-0395, Japan2

Dep. App. Chem., Fac. Eng., Kyushu U., 744 Motooka, Nishi-ku, Fukuoka 819-0395, Japan†kamihira@chem-eng.kyushu-u.ac.jp
Acute liver failure (ALF), even when transient, is a life-threatening condition characterized by rapid

deterioration of liver functions. Liver transplantation is the standard treatment for ALF, but is also limited bydonor organ shortage, surgical complications, and the need for lifelong immune suppression. Bioartificial
liver systems can provide a window of opportunity for transplantation, or for the liver to regenerate to fullfunctionality, potentially eliminating the need for transplantation. However, one of the most important limiting
factors to this approach is the persistent lack of expandable and functional hepatic cells. To address thischallenge, we have developed heat-inducible hepatic (hi-Hep) cells derived from the human hepatocellular
carcinoma cell line HepG2. These hi-Hep cells can be easily expanded and then induced into functional
hepatic cells by heat shock at 43o C for 30 min.
In the current work, we have optimized the viability and functionality of hi-Hep cells by microencapsulation
within functionalized biopolymers as extracellular matrix (ECM). Initially, single cells were seeded in an ultralow attachment culture vessel with U-shaped microwells, allowing the formation of hi-Hep microtissues within
24 to 40 hours, followed by heat shock to induce enhanced liver-specific functions. Then, using the On-chip®
Droplet Generator, the microtissues were entrapped with thiol-modified alginate (Alg-SH) and gelatin (GelaSH), horseradish peroxidase (HRP), and glycine-tyrosine (Gly-Tyr) dipeptide by water-in-oil droplets. ThroughHRP-catalyzed redox reaction, the droplets underwent hydrogelation by crosslinking of the thiol moieties.
Subsequently, poly-L-ornithine (PLO) was used to form membranes around the generated microgels, followedby the introduction of L-cysteine for the reduction of -S-S- bonds, leading to the dissolution of internal gels andpromoting flexibility as well as intercellular interactions within the encapsulated hi-Hep microtissues.
After encapsulation, hi-Hep microtissues without (HS[−]) and those with (HS [+]) heat shock were cultured
in William’s E medium supplemented with 1 % (v/v) B27 (with vitA), 0.1 % (v/v) ITS-X, 50 ng/ml EGF, 20µM forskolin, 100 µM dexamethasone, 3 nM triiodothyronine, 5 µM DAPT, 2 mM nicotinamide, and 2 mM
L-ornithine-L-aspartate. Cell survival and ability to perform liver functions were evaluated on days 1, 3 and5 after heat shock. For ammonia removal, medium was collected after 24 h incubation in fresh functional
medium containing 2 mM NH4Cl, and concentrations were measured using the Ammonia Test kit. Functional
microtissues in capsule membranes showed cell survival and increased ammonia detoxification.

9

They also showed the highest cytochrome P450 (CYP3A4) activity compared with bare microtissues or
those in undissolved gels. The ability to control cellular microenvironment for promoting the viability andfunctionality of the hi-Hep cells represents a pivotal step towards bioartificial liver development. In addition,
this study provides a basis for the microencapsulation of cell aggregates within redox-responsive hydrogels
as a versatile platform for liver tissue engineering.
Keywords: heat inducible, HepG2, microencapsulation, liver function
References:
1.Kitano et al., Cells 2022, 11(7), 1194; https://doi.org/10.3390/cells11071194
2.Moriyama et al., Chem. Commun., 2014, 50(44), 5895-8;
https://doi.org/10.1039/c3cc49766f

Academic background:
09/2008‒12/2013

University of Arkansas at Little Rock (Arkansas, USA):
Bachelor of Science (Biology: Molecular Biotechnology)

04/2021‒03/2023

Kyushu University (Fukuoka, Japan)
Master of Engineering (Chemical Engineering)Work experience:
01/2014‒12/2014

BioMedNanoTech, Inc. (Arkansas, USA):Lab Technician (Molecular Diagnostics)

01/2015‒07/2017

INES-Ruhengeri - Institute of Applied Sciences (Musanze,
Rwanda):08.2017‒03/2019

Lab Analyst (Molecular Haematology)
Scientific Innovations Ltd. (Kigali, Rwanda)
Forensic Lab Analyst (DNA Profiling for human identification)

Research Interests:
1. Cell line development
2. Microfluidic systems
3. In-silico tissue engineering

10

IL-6
オープン型マイクロ流路によるシングルセルアレイ
中央大学理工学部

精密機械工学科鈴木 宏明
近年、細胞の性質を個別に調べたり、機能の高い細胞を選別したりするシングルセル解析・操作技術が加速度的に発展しています。数ある多様な技術のうち、顕微鏡等で細胞を観察して選別する技術は、
オーソドックスでありな
がら強力かつ汎用性の高い方法です。
しかし、
ディッシュ等の底にランダムに撒かれた細胞を認識して選別吸引するためには、高度な画像認識やピペットの位置決め制御が必要です。一方、マイクロ流路を使って細胞をトラップしアレイ状に並べる技術が多く開発されており、これを用いれば、細胞の認識や観察が効率化されます。
しかし、
これらのマイクロ流路は、一般的に閉鎖空間となっているためトラップ後に外部から吸引することが不可能で、かつ、送液ポンプを要するためシステムが大型化してしまうという課題がありました。
私たちは、
オープン型マイクロ流路をシングルセルトラップ・アレイ形成に適用することで、上記の課題を解決しました。
オープン型マイクロ流路とは、チップの上面に設けた溝の中に、自発的な毛管力（Spontaneous capillary
flow, SCF）によって水が流れる現象を利用した微量流体制御手法です。従来のオープン型マイクロ流路は0.1~1mm程度のサイズで、10マイクロメートル（0.01mm）の細胞のトラップは実現されていませんでした。私たちは、細胞と同程度のサイズの溝の中だけを精密に親水化する方法を開発し、オープン型マイクロ流路における細胞トラップを実現しました。
このチップでは、流路の端に一滴の液をたらすだけで、自発的に溝の中に流れが生じます。
マイクロ流路の構造を、細胞や粒子が捕捉できる形状にしておくと、液の中に含まれた粒子や細胞が流路中を流れ、決まった場所に固定されます。
ポンプが不要で、簡易的に細胞の配列ができるだけでなく、表面が開放されているため、ガラス管やピペットで望みの細胞を取得できます。
このオープン型流路は、様々な流路デザ
インにも容易に移植できると考えています。
今後は、このシステムをさらに進化させ、細胞の画像
AI認識等と組み合わせた細胞のスクリーニングシステ
ムを構築していきたいと考えています。

【略歴】
2003年

東京大学大学院工学系研究科機械工学専攻

2003～2007年

東京大学生産技術研究所

2007～2013年

大阪大学大学院情報科学研究科

学位取得

博士
（工学）

助手・助教
准教授

2013～2015年 中央大学理工学部精密機械工学科准教授

2016～現在

教授

中央大学理工学部精密機械工学科

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CP-1
プラズマによる新規育種方法とハイスループット全自動微生物スクリーニン
グシステムのご紹介
アズワン株式会社

専門事業本部 ソリューション・デザイン部

櫻井 美幸
新規微生物株の樹立には、UVやイオンビームによる変異株の作出、その後平板プレートによるスクリーニングが用いられてきました。本発表で紹介するTMAXTREE社の3製品は、従来の微生物育種方法とは異なる装置であり、新たな微生物株の作出を促進するための強力なツールとなることが期待されます。
①常圧室温プラズマ放電誘発突然変異育種装置 ARTPはプラズマを利用した育種装置です。高周波グロー放電
原理を利用し、高エネルギープラズマを産生します。
それにより生じた高エネルギー活性粒子は対象サンプルの遺伝子（DNA）に強いダメージを与え、損傷したDNAはSOS応答により修復される過程でミスプライミングによって様々な変異が誘導され、多様な変異株を作出することができます。
②微量液滴-微生物培養システムMMCは、「培養」「サンプリング」「OD / 蛍光測定」「継代培養」「スクリーニング」のすべての工程を全自動で行うことが可能な装置です。
マイクロフルイディクス技術とドロップレット技術を融合したテクノロジーを使用しており、2μlのwater-in-oilドロップレットを最大 200 個形成し、ハイスループットな微生物培養や適応進化、スクリーニングを自動で行うことが可能です。
③シングルセル微量液滴培養システム MISScellは、液滴と液滴の間にガスを充填することにより104個の液滴を一度に培養することが可能です。間にガスを充填することにより、糸状菌などの菌糸を伸ばす菌の培養も実現しました。
また培養を行った液滴のOD、蛍光または化学発光を測定し、目的の液滴をシングルの状態で、ロボットで全自動回収することができます。
本発表では、これらの製品の紹介と実際のアプリケーション例を併せて紹介いたします。

常圧室温プラズマ
放電誘発突然変異育種装置
ARTP

12

微量液滴-微生物培養システム
MMC

シングルセル
微量液滴培養システム
MISScell

CP-2
分注装置・簡易ロボットを活用したコロニーピッカー自動化ソリューション
のご紹介
バイオテック株式会社 ラボ・オートメーション事業部

友歳 剛
私たちバイオテックは、
近年急速に成長を遂げ、今後も大きな拡大が望めるバイオものづくり分野向けの自動化ソリューション提案に力を入れています。
バイオものづくり分野の「価値の源泉」
たる微生物設計のプラットフォーム技術の発展を加速させる「自動化構築・機器開発」を目指しています。
本発表では、特に相談の多い自動分注装置、プレートスタッカー、
プレート搬送ロボットとマイクロテック・ニチオン社製コロニーピッカーを活用した自動化システム例をご紹介します。
例）① 96ディープウェルプレート、96PCRプレートに培地・試薬等を分注後、コロニーピッカーへ移送② 寒天培養プレートをコロニーピッカーへ移送③ コロニーピッカーにてコロニーピッキング・PCRレプリケーションを同時に実施④ 作業完了した96PCRプレート・96ディープウェルプレート・寒天培養プレートの情報をコロニーピッカーより随時受け取り、
自動で次のプレートへ交換

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CP-3
3D培養におけるAGMカプセルの有用性とその未来について
株式会社東陽テクニカ ワン・テクノロジーズ・カンパニー シニアプロダクトコンサルタント

田代 孝之
当社が販売する「細胞カプセル化試薬(AGMTM)」
は、細胞を生体適合性のある保護カプセルに封入することで最適な生存環境を維持でき、水溶系の中で3D構造の維持が可能です。CO2インキュベータでの2D培養環境下で3D培養が可能になり、低コストで3D培養を実現できます。
また、細胞移植、細胞ベースの治療的送達、制御された薬物送達など、多くの研究領域での活用が想定されます。
なお、
このカプセル化に伴う膜形成により、自己免疫系からの攻撃に対する抑制・防御機構としても機能すると考えられており、異種間移植などへの応用も考えられます。
ヒト乳がん細胞由来のMCF-7をAGMのカプセル内で12日間培養してスフェロイド化。
カプセルには多孔性のアガロースゲ
ルのシェルで数十～数百nm(ナノメートル)の細孔が開いており、封入後もガスや培地成分の交換が容易に行える。

【 主な特長 】■ AGMカプセル内での培養細胞は生体内に近い３D環境を保持■ スフェロイド培養時の生存率向上に寄与：ゲルビーズとの比較■ オルガノイドへの応用を検証中■ ディッシュ培養(2D細胞培養)環境下で課題となってきた細胞変性を抑制■ バイオリアクター内での撹拌時の剪断力からの保護効果■ 多孔性膜から成るカプセルなので迅速な培地交換・ガス交換が可能■ 2種類状の異なる細胞種の共培養が可能＜用途＞※一部検証中■ カプセルの多孔性を活用したエクソソームなど細胞外小胞体などの分離・採取■ スフェロイド、
オルガノイドなどカプセル細胞を活用した研究■ Organ on Chip(生体機能チップ)の応用研究■ 細胞培養の保護カプセル(せん断力からの保護など)■ カプセルの膜構造により免疫細胞からの攻撃の排除■ 腸内フローラ改善物質用搬送への応用■ 多孔性膜のカプセル壁面を使った迅速な薬液交換による薬効評価
AGM-1000 細胞カプセル化試薬(AGM™)

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CP-4
小さく産んで大きく育てる: マイクロ流体デバイスによる微小液滴／
エマルション生成製品とその拡張性
株式会社ASICON

代表取締役

次田 友暁
URL: www.asicon-tokyo.com / Email: asicon-tokyo@asicon-tokyo.com
マイクロ流体デバイスで微小な液滴を生成する際に用いる，
マイクロ流体チップ(microfluidic ChipShop製)と送液装置(Fluigent製)，
及びアプリケーション事例を紹介します。
これらの製品の特徴として，off-the-shelfアイテム(カタログ掲載品)からカスタマイズ･OEM製品まで，お客様の御希望に広くお応えできる点が挙げられます。

図: マイクロ流体チップと送液装置のプロダクトレンジ。口頭発表では，
液滴生成にフォーカスして製品を紹介予定。

■ カタログ掲載品をモジュールとしてユーザ自身で自由に組み合わせ，ラボで実験をすること■ 特定の目的に即したキットやプラットフォームを購入して，直ちに実験を開始すること■ 新規デザインやコンセプトの製品をサプライヤーとともに共同開発すること
これらのいずれのサービスも提供しています。
今回の発表では，初めの2点に着目し，カタログ掲載品のマイクロ流体デバイスを用いて行うことができる液滴生
成の世界と，
その可能性を紹介いたします。
様々な種類やサイズの液滴を生成し観察するためのマイクロ流体デバイスと，その柔軟性をお分かりいただけるかと存じます。

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LS-1
オンチップ・バイオテクノロジーズ製品紹介
株式会社オンチップ・バイオテクノロジーズ営業部
On-chip® Droplet GeneratorとOn-chip® Droplet Selectorを中心としたオンチップ製品の詳細をご説明い
たします。

LS-2
Future technology オンチップ・バイオテクノロジーズ
株式会社オンチップ・バイオテクノロジーズ開発部
当社開発を経て、新製品として販売開始/予定している製品をご紹介いたします。

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株式会社オンチップ・バイオテクノロジーズ

協賛企業

バイオテック株式会社

シスメックス株式会社

アズワン株式会社

株式会社東陽テクニカ

bitBiome 株式会社株式会社 ASICON

WiFi 情報

SSID：UDXC-A
PASS：UDXC-A-06
SSID：UDXC-B
PASS：UDXC-B-06
SSID：UDXC-C
PASS：UDXC-C-06

公式サイト<主催> 株式会社オンチップ・バイオテクノロジーズ