2020/11/26

第33回日本外科感染症学会
教育委員会企画プログラム

第33回日本外科感染症学会総会・学術集会

外科医が知っておくべき
微生物検査について

発表者のCOI開示
川村 英樹
演題発表に関連し、発表者らに開示すべきCOI関係にある企業などはありません。

プレゼンター：川村 英樹（鹿児島大学病院 感染制御部）
パネリスト：渡邉学（東邦大学医療センター大橋病院 外科）
木村豊（近畿大学医学部外科（上部消化管部門））
尾原秀明（慶應義塾大学医学部 一般・消化器外科）
畑啓昭（国立病院機構京都医療センター 外科・感染制御部）

1

2

耐性菌伝播・定着・増殖のメカニズム

Q1. “Diagnostic Stewardship”という言葉をご存知ですか？

; 常在菌; 外部から進入した耐性菌; 患者体内で生じた耐性菌; 高度耐性菌• はい• いいえ

抗菌薬の投与選択圧

耐性菌の選択的増加
高度耐性菌の出現

外部から耐性菌定着「抗菌薬の適正使用」

抗菌スペクトルの広域な抗菌薬の多用は、宿主・病院環境の耐性菌増加を誘導する

34感染症の治療

Diagnostic Stewardship

感染症の発症• 発熱• 白血球数・炎症反応の上昇• 臨床症状• 治療方針の決定のためにより良い微生物診断を行うための協調的な指導と介入により抗菌薬の適正使用を図る活動• 抗菌薬適正使用活動の中核をなすもの

原因となる病原体は？
細菌検査による原因病原体の検索• 重症感染症ではまず想定される原因病原体を広くカバー=「経験的治療 Empirical therapy」• 原因病原体が判明したら狭域抗菌薬に最適化=「de-escalation」
抗菌薬による治療

5WHO. Diagnostic stewardshipA guide to implementation in antimicrobial resistance surveillance sites

561

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Diagnostic Stewardshipの実際• 検査前介入：適切な検体採取• 検査介入：適切な検査方法の実施• 検査後介入：適切な検査結果解釈

臨床診断

治療再評価

検体採取

経験的治療の開始

検体と臨床情報の送付検体処理
結果解釈
結果の送付
WHO. Diagnostic stewardshipA guide to implementation in antimicrobial resistance surveillance sites

78

TEN POINTS OF IMPORTANCE
1. 品質の悪い検体は拒否する必要がある
2. 医師は発育した菌の全てを報告することを要求しない。不正確な診断や不適切な治療につながる可能性のある無関係な情報を提供する可能性がある

検査前
適切な検体採取

3. 共生微生物叢の「バックグラウンドノイズ」は可能な限り避ける（下気道検体（喀痰）、副鼻腔、表在性創傷、瘻孔）
4. 検体は原則としてスワブではなく、組織・吸引物や体液等を用いる。
5. 検査室は明文化された手順書に沿って検査を行う．
6. 検体は抗菌薬投与前に採取する．
7. 感受性検査は，臨床的意義が明らかな分離菌株に対してのみ行う．
8. 検査結果は，正確，有意，臨床的意義があるものを報告する
9. 技術的な方針は医療スタッフではなく、検査室が決定する．ただし，多職種とのコミュニケーションと相互尊重が協調的な方針決定につながる
10. 検体のラベリングは適切に行う．
A Guide to Utilization of the Microbiology Laboratory for Diagnosis of Infectious Diseases:
2018 Update by IDSA and ASM

910Q2. 創部培養で優先すべき検体は？

Q3. どちらの喀痰が検体として最適？

a. 組織・吸引物
b. スワブ検体a.

b.

https://www.m3.com/kenshu_saizensen/2015/150701_1_3.jpg

11122

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Q4. どちらの便が検体として最適？

Q5. 血液培養の採取時の皮膚消毒薬はa.

a. アルコールb. クロルヘキシジンアルコールc. ポビドンヨード

b.

1314

ブリストル便形状スケール

Miller and Jones分類
肉眼による喀痰品質評価• M1：唾液、完全な粘液痰• M2：粘液痰の中に膿性痰が少量含まれる• P1：膿性痰が1/3以下• P2：膿性痰が1/3〜2/3• P3：膿性痰が2/3以上

P2以上が推奨15

CDIを疑った際には、ブリストル便形状スケールのスコア5以上の便を検査に提出する

16

腹膜炎の検体• 好気・嫌気培養(二次性腹膜炎の場合）• 培養前のグラム染色• 10-50mLの濃縮腹水• (複数菌の関与がグラム染色であきらかではない場合は）血液培養ボトルに入れた検体• 検体搬送: 室温, 1時間以上かかる場合は4℃

血液培養• 原因微生物を同定するため、また重症感染症を見逃さないため、感染症の発症が疑われたらできるだけ早期に実施を• 抗菌薬の影響をさけるために治療の開始前に採取する。

青のボトルが好気、オレンジのボトルが嫌気

A Guide to Utilization of the Microbiology Laboratory for Diagnosis of Infectious Diseases:
2018 Update by IDSA and ASM

1718183

2020/11/26

菌血症・コンタミネーションでの血液培養陽性率

必要な血液培養のセット数は？
24時間以内に3回以上の血液培養が施行された163例の血流感染症患者
における血液培養の累積感度（％）

100806065%

80%

96%

100％

40200

1回

2回3回4回

Cockerill III FR. Et al. Clin Infect Dis 38:1724-30, 2004

1セットだけでは適量の培養血液が確保できず、多くの菌血症を見逃す恐れ→ 通常の場合は2セット、可能ならば3セットの血液培養検体セットを、別々の部位から採取することが望ましい。
191920

Weinstein MP et al. Rev Infect Dis. 1983;5:35-53.

20

採取法• 培養セットあたり20〜30 mLの血液が推奨- 血流中の微生物のより高い回収に• 可能な限り、異なる静脈穿刺部位から複数セットの血液培養を収集する- 静脈血で可- カテーテルで採取した血液培養は、汚染のリスクが高い• 無菌的に採取• 採取後すぐに培養を。輸送が遅れる場合は血液培養ボトルを室温に保つ
A Guide to Utilization of the Microbiology Laboratory for Diagnosis of Infectious Diseases:
2018 Update by IDSA and ASM

21(鹿児島大学病院感染対策マニュアル)

22

22

TEN POINTS OF IMPORTANCE (検査前)
1.品質の悪い検体は拒否する必要がある
2. 医師は発育した菌の全てを報告することを要求しない。不正確な診断や不適切な治療につながる可能性のある無関係な情報を提供する可能性がある検査
適切な検査の実施

3. 共生微生物叢の「バックグラウンドノイズ」は可能な限り避ける（下気道検体（喀痰）、副鼻腔、表在性創傷、瘻孔）

4.検体は原則としてスワブではなく、組織・吸引物や体液等を用いる。
5. 検査室は明文化された手順書に沿って検査を行う．

6.検体は抗菌薬投与前に採取する．
7. 感受性検査は，臨床的意義が明らかな分離菌株に対してのみ行う．
8. 検査結果は，正確，有意，臨床的意義があるものを報告する
9. 技術的な方針は医療スタッフではなく、検査室が決定する．ただし，多職種とのコミュニケーションと相互尊重が協調的な方針決定につながる

10.検体のラベリングは適切に行う．
A Guide to Utilization of the Microbiology Laboratory for Diagnosis of Infectious Diseases:
2018 Update by IDSA and ASM

23244

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Q6. 所属する施設の院内に細菌検査室がありますかQ7.所属する施設の院内でグラム染色が可能ですか？

• はい
• いいえ

• はい
• いいえ

25

26

Q8. インフルエンザ菌を分離する培地は症例• 血液寒天培地• チョコレート寒天培地

77歳男性• 直腸癌からの腸閉塞のため術前精査目的入院• 2週間前に経鼻胃管と右内頚静脈からシングルルーメンの中心静脈カテーテルが挿入• 本日悪寒を伴う38.8℃の発熱出現• 既往：高血圧（アムロジピン内服）
20歳時に虫垂炎で手術
薬剤アレルギーなし

2728

一般細菌検査のオーダー• 翌日の血液培養検体から静脈血（CVカテーテル血と末梢血）2セットから検出

01 顕微鏡検査（グラム染色）
細菌の有無や菌量、菌の大まかな分類を判断
培養同定検査検体を色々な培地で培養。
コロニーや生化学的性状等で菌名を決定

02

03 薬剤感受性検査
各種細菌に対する抗菌薬の効果を判定

04・05 真菌検査/真菌感受性検査
真菌の同定、抗真菌薬の効果を判定
06

嫌気培養検査必要に応じて目的菌を入力(スクリーニング培地等を用いることで判定が迅速かつ的確に菌を検出することができる）

Q9. 抗菌薬をどのように選択しますか？

3029305

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細菌検査の流れ
１日目：検体提出、分離培養、グラム染色
検体を培地に塗布してコロニーを作るまで育てる操作を『分離培養』と言う。細菌にとって必要な栄養素を含む寒天培地に検体を塗布し、37℃のフラン器で18～24時間培養する。
鹿児島大学病院
微生物検査室

検査部

各種培地

3132グラム染色• 迅速検査のひとつ 約10分で判定可能• 菌の染色・形態から原因菌が推定できる。
• 当院では血液培養検出菌などは電子カルテからも確認可

グラム陽性球菌（黄色ブドウ球菌）

グラム染色による検体の質的評価(Geckler分類)
群

細胞数
上皮細胞
＞２５＞２５＞２５１０〜２５＜１０＜１０１２３４５６グラム陰性桿菌
(緑膿菌)

好中球
＜１０１０〜２５＞２５＞２５＞２５＜１０333334

使用する培地

２日目：培地観察、菌種同定、薬剤感受性試験
培養すると，菌が増殖して目に見えるほどのコロニーを作る。このコロニーを用いて確認試験等を行い、菌名を調べる検査を「同定検査」と言う。

• 血液寒天培地• チョコレ―ト寒天培地
Haemophilus、Neisseriaなど栄養欲求の厳しい菌の分離培養①• BTB乳糖加寒天培地
グラム陰性桿菌用の非選択培地✓大腸菌群などの乳糖分解菌: 黄色の大きなコロニーを形成✓Staphylococcus, Enterococcus等の球菌: 小さなコロニーを形成✓乳糖非分解菌: 無色透明のコロニーを形成②
24時間培養後の血液寒天培地• 耐性菌選択培地

35

感受性試験・同定検査のために純培養を行う
コロニーより直接、質量分析装置で同定を行う

36

6

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菌種同定

薬剤感受性試験• これまではコロニー・グラム染色など形態学的特徴、生化学性状試験などにより菌種を同定• 田中耕一氏(2002年ノーベル化学賞受賞)の開発成果を発端とした「MALDI-TOF MS」を用いた菌種同定法が開発• レーザーでタンパク質分子をイオン化しその質量を分析、パターンを解析して菌種を同定• 当院では微量液体希釈法で評価• 数段階の抗菌薬の希釈系列を作製し、菌を接種→菌の発育を抑制する最小の濃度（最小発育阻止濃度：MIC）を測定→

http://www.an.shimadzu.co.jp/ms/axima/princpl1.htm

最小発育阻止濃度は2μg/mL

菌種と抗菌薬によってカットオフ値が決められ（ブレイクポイント）、この値を境に細菌学的に感性(S)/中間(I)/耐性(R)を判
断• 同定結果が早く判明（一般細菌は約1日短縮）

3738

ブレイクポイント(μg/mL)(CLSI-M100-27th)

Q10.
抗菌薬の選択をどのように行いますか?

39

MPIPC (oxacillin)≦2

CFX (cefoxitin)≦440

監視培養検査耐性菌が問題となる部署で、適切な伝播防止策をとるための保菌者スクリーニングを目的とした培養検査• MRSA監視培養（ICU, 救急, NICU, 心臓血管外科, 整形外科, 呼吸器外科）• MDRP, MDRA, CRE（ICU, 救急）（メチシリン耐性黄色ブドウ球菌）

MPIPC: オキサシリン, ≧4μg/mlで耐性
CFX: セフォキシチン,≧8μg/mlで耐性

41

42

427

2020/11/26

抗菌薬の不活化
β-ラクタマーゼ：β-ラクタム薬（ペニシリン系・セフェム系・カルバペネム系等）を分解する酵素

細菌の抗菌薬に対する耐性メカニズム
抗菌薬②

抗菌薬の不活化

β-ラクタマーゼ

分解酵素

抗菌薬の排出

外膜

細胞膜

ESBL
（基質拡張型βラクタマーゼ）
MBL(メタロβラクタマーゼ)

内膜

細胞質

①

ペニシリン セフェム カルバ系
系
ペネム系

酵素
③

○

○

○

○

○

プラスミド性: 他の菌種への伝播まん延が危惧

作用点の変異MRSAなど緑膿菌（カルバペネム耐性）

他にもペニシリナーゼ（ペニシリン分解酵素）などのβ-ラクタマーゼが存在

43

44

ESBL産生確認試験

カルバペネマーゼ産生試験

CLSI 法（ディスク法）
CAZ/CVAまたはCTX/CVA の阻止円径が単剤の阻止円径に比べて 5mm 以上拡大

Carba NPテスト
細菌の産生するcarbapenemaseがimipenemを分解することで，液相中のpHが酸性に変化し，添加してあるpH指示薬のフェノールレッドが黄変

山田景土他. 日本臨床微生物学雑誌 27(4), 267-74. 2017.

4546

細菌検査の流れ
セフェム系抗菌薬に耐性感染症が疑われる
患者の探知

カルバペネム系抗菌薬に耐性

治療
再評価

経験的治療
開始

検体
提出

検体処理

• グラム染色• 分離培養→菌種同定• 薬剤感受性試験

薬剤耐性菌と推測されれば、確認試験を行う
結果は4〜5日目に報告

47

結果
報告

検体採取

488

2020/11/26

TEN POINTS OF IMPORTANCE (検査)1. 品質の悪い検体は拒否する必要がある
2. 医師は発育した菌の全てを報告することを要求しない。不正確な診断や不適切な治療につながる可能性のある無関係な情報を提供する可能性がある検査
血液培養の重要性

3. 共生微生物叢の「バックグラウンドノイズ」は可能な限り避ける（下気道検体（喀痰）、副鼻腔、表在性創傷、瘻孔）
4. 検体は原則としてスワブではなく、組織・吸引物や体液等を用いる。

5. 検査室は明文化された手順書に沿って検査を行う．
6. 検体は抗菌薬投与前に採取する．

7. 感受性検査は，臨床的意義が明らかな分離菌株に対してのみ行う．
8. 検査結果は，正確，有意，臨床的意義があるものを報告する

9. 技術的な方針は医療スタッフではなく、検査室が決定する．
ただし，多職種とのコミュニケーションと相互尊重が協調的な方針決定につながる
10. 検体のラベリングは適切に行う．
A Guide to Utilization of the Microbiology Laboratory for Diagnosis of Infectious Diseases:
2018 Update by IDSA and ASM

4950

血液培養の陽性率
肺炎7-24% 3)

急性胆嚢炎7.7-15.8% 2)

腎盂腎炎

21-42%髄膜炎51-66% 3)

急性胆管炎

21-71% 2)

敗血症25% 1)

敗血症性ショック

69% 1)

血液培養の流れ3)

菌血症が疑われる
患者の探知

血液培養
採取

経験的治療
開始

血液培養
ボトル提出

血液培養陽性陰性

ボトル培養開始• 血液培養の陽性率は決して高くない• 血液培養が陽性になった場合、原因微生物が確定する→ 抗菌薬の適切な選択につながる
原因感染巣の評価につながる

治療
再評価結果
報告

• 感染症の重症度を反映する

1) JAMA. 1995 11;273: 117-23.
2) 日本肝胆膵外科学会 急性胆管炎・胆嚢炎の診療ガイドライン
3) 感度と特異度からひもとく 感染症診療のDecision Making p110-6.
51 文光堂

51

血液培養

52

インキュベーター（鹿児島大学病院）

血液培養陽性の探知1.ボトル中の微生物が発生したCO2がセンサーのpH変化を誘導
2.このpH変化は、シリコンエマルジョン中の蛍光色素層に影響
3.機器本体から発せられる緑色励起光により励起されたCO2センサーは、蛍光を発光

4.機器本体にある赤色蛍光検出センサーが蛍光を感知

535492020/11/26

自動多項目同時遺伝子関連検査システム
Verigene®システム• 血液培養試験陽性判定後、3時間以内に細菌と薬剤耐性（AMR）遺伝子を同時検出• グラム染色• サブカルチャー→菌種同定・薬剤感受性試験
早期の検査実施が早期の結果判明につながる✓ すぐに受付？
✓ 陽性ボトルはすぐに処理？

55

56

Q11. 血液培養の時間外対応について夜間休日の血液培養検査

a. 検体受付のみ実施
b. 陽性ボトルのグラム染色を実施
c. 陽性ボトルのサブカルチャーを実施
d. 陽性ボトルの同定または遺伝子検査を実施
e. なにもしていない

57

• 利点
➢菌血症の早期探知→抗菌薬投与の迅速化➢サブカルチャーの早期開始→抗菌薬最適化の迅速化

58

問題点

改善が難しい血液培養検査プロセス

微生物検査室の視点（誰が、どこまで？）➢院内検査室・培養装置の有無➢微生物検査室以外の臨床検査技師の協力➢検査機器（質量分析・遺伝子検査）
検体を採取する・報告を受ける側の視点（誰が、どこまで？）➢夜間・休日の検体採取➢結果がちゃんと活用されるか？
◆報告の流れ 看護師→日当直医→主治医？→AST？
◆報告を受けた対応 抗菌薬の投与判断→選択
日馬由貴他. 日本臨床微生物学会雑誌 29 (2), 88-91. 2019.

59

60

102020/11/26

改善が難しい血液培養検査プロセス

検査後
適切な結果の解釈

日馬由貴他. 日本臨床微生物学会雑誌 29 (2), 88-91. 2019.

6162

生体常在細菌叢
菌種

Staphylococcus epidermidis

皮膚 口腔Enterococcus faecalis±++++グラム陽性
Corynebacterium spp
桿菌+±±+グラム陽性 Staphylococcus aureus
球菌
Streptococcus mitis

Escherichia coli

グラム陰性
Klebsiella spp桿菌

Pseudomonas aeruginosa+±±+++

大腸・
糞便+++±• 保菌か感染か？
• 菌の分離状況によって判断
グラム染色の貪食像など

63

63

64

菌種別の菌血症・コンタミネーションの頻度

菌量

菌種• 無菌検体→少数でも原因病原体
• 喀痰
• 尿量

106CFU/mL以上
103 CFU/mL

菌血症

コンタミネー

判定困難

ション

黄色ブドウ球菌

178 (87.2)

13 (6.4)

肺炎球菌

34 (100)

00

緑色レンサ球菌27 (38.0)

35 (49.3)

9 (12.7)

他のレンサ球菌21 (67.7)

6 (19.4)

4 (12.9)

腸球菌

65 (69.9)15 (16.1)

13 (14.0)

コアグラーゼ陰性ブドウ球菌

87 (12.4)575 (81.9)

41 (5.8)

Corynebacterium spp.

1 (1.9)51 (96.2)

1 (1.9)Bacillus spp.

1 (8.3)11 (91.7)

00

48 (100)

0Propionibacterium acnes

13 (6.4)

Weinstein MP et al. Clin Infect Dis. 1997;24:584-602.

6566

112020/11/26

菌種
大腸菌

菌血症

コンタミネーション

判定困難

142 (99.3)

01 (0.7)

肺炎桿菌

65 (100)

00

他の腸内細菌科グラム陰性菌

104 (96.3)

1 (0.9)3 (2.8)

緑膿菌

53 (96.4)

1 (1.8)1 (1.8)Bacteroides fragilis group16 (88.9)02 (11.1)

Candida spp.

56 (93.3)0

Cryptococcus neoformans

8 (100)0

接触予防策• 器具（聴診器、血圧計、体温計）を専用化する。
• 手指衛生を徹底し、ケア時はエプロンや手袋を着用する。
個室隔離の基準
治療抗菌薬
3剤耐性緑膿菌・アシネトバクター ほとんどなし

検出頻度
まれカルバペネム耐性腸内細菌科細菌

限定

まれ

バンコマイシン耐性腸球菌

限定

極まれ4 (6.7)

バンコマイシン低感受性・耐性黄色ブドウ球菌

限定

極まれ

0

2剤耐性緑膿菌・アシネトバクター

限定

まれ

メタロβ-ラクタマーゼ産生菌

限定

まれ

MRSA

あり

多い

個室隔離の
絶対的適応
→1例目の検出でアウト
ブレイク対
応
個室隔離が
基本

Weinstein MP et al. Clin Infect Dis. 1997;24:584-602.

67

68

TEN POINTS OF IMPORTANCE(検査後)
1. 品質の悪い検体は拒否する必要がある

特殊な検査
遺伝子検査
新型コロナウイルス検査

2. 医師は発育した菌の全てを報告することを要求しない。不正
確な診断や不適切な治療につながる可能性のある無関係な情報を提供する可能性がある
3. 共生微生物叢の「バックグラウンドノイズ」は可能な限り避ける（下気道検体（喀痰）、副鼻腔、表在性創傷、瘻孔）
4. 検体は原則としてスワブではなく、組織・吸引物や体液等を用いる。
5. 検査室は明文化された手順書に沿って検査を行う．
6. 検体は抗菌薬投与前に採取する．
7. 感受性検査は，臨床的意義が明らかな分離菌株に対してのみ行う．

8. 検査結果は，正確，有意，臨床的意義があるものを報告する
9. 技術的な方針は医療スタッフではなく、検査室が決定する．ただし，多職種とのコミュニケーションと相互尊重が協調的な方針決定につながる
10. 検体のラベリングは適切に行う．
A Guide to Utilization of the Microbiology Laboratory for Diagnosis of Infectious Diseases:
2018 Update by IDSA and ASM

6970

C. difficile迅速検査• GDH 検査が陽性でトキシン検査が陰性の場合、遺伝子検査(NAAT) を行うことを弱く推奨する。
• NAAT をはじめから行わないことを弱く推奨するが、アウトブレイク時には行うことを弱く推奨する。

遺伝子検査導入前の当院でのCDトキシン検査判定フローチャート

GDH:

グルタミン酸脱水素酵素CDの抗原

1) Lancet Infect Dis 2013; 13: 936-452) J Clin Microbiol 2013; 51:1152-77172

122020/11/26

新型コロナウイルス検査について

Q13. 抗原定性検査は唾液検体でも可能 ？

Q12. PCR検査に偽陽性は

a. はいb. いいえ

a. あるb. ない7374

Q14. 唾液検体は発症10日目以降でも検査実施可能かリアルタイムPCR
PCR 増幅産物を蛍光により検出、増幅量をリアルタイムで解析する方法
電気泳動が不要で迅速性が高く、定量性もある。

• はい
• いいえ

https://www.wakenyaku.co.jp/jtk/det.php?i=10777576

SARS-CoV-2 PCRの工程• 偽陽性（非特異反応）の可能性

検体採取
RNA抽出(30-60分)• 用手法：市販の抽出キット等を用いて行う（コンタミリスクがある、マンパワーの消費）• 自動抽出：市販の自動抽出機器等を用いて行う• 抽出不要：測定装置に抽出操作が組み込まれている（導入のイニシャルコストが発生）

RNA増幅・検出(35-150分)

7877

78132020/11/26

PCR検査の精度管理• 陽性コントロールかかる工程を経ているか• 陰性コントロール
試薬調整などでコンタミネーションがおこっていないか• 内部コントロール
サンプルにPCR反応がきちんと起こっているか• ウイルスが壊れてもターゲット遺伝子がのこっていればPCRは陽性になる。
• 場合によっては3か月も陽性となるケースも熟練した人材が必要

80

7980

新型コロナウイルス感染症の患者（有症状者）の退院の取扱い① 発症日から10日間経過し、かつ、症状軽快後72時間経過した場合② 症状軽快後24時間経過した後、24時間以上間隔をあけ、２回のＰＣＲ検査で陰性を確認＊必ずしもPCR検査で陰性を確認する必要はない

https://news.yahoo.co.jp/byline/kutsunasatoshi/20200517-00178720/
doi:10.1001/jama.2020.8259

令和２年６月２５日厚生労働省通知
828182

抗原定量検査CLEIA（化学発光酵素免疫測定法）

抗原定性検査（イムノクロマト法）

試薬の反応により、複合体形成
磁力で集磁した後に洗浄を行い、未反応物を除去
発光試薬を添加し発光量を測定

83

8414

2020/11/26

抗原定性検査の感度

抗原定量検査キットの陽性・陰性一致率• 換算RNAコピー数
100 copy/test以上 一致率 83％（5/6 例）
30 copy/test以上 一致率 50％（6/12 例）→ウイルス量が低いと偽陰性となる
厚生労働省

SARS-CoV-2 抗原検出用キットの活用に関するガイドライン

2020/5/13

非COVID-19症例での偽陽性の可能性もOgawa T et al. J Clin Virol. 2020; 131: 104612

85

86

検体の種類

• 唾液
粘調度が高いことから、検体処理に手間を要する
自然に徐々に流出する唾液を滅菌チューブに 1〜2mL 程度溜める。
✓脱水等で唾液が出ない被検者は、検出感度が低下すると予想✓飲食等の後、歯磨きを行った後、できれば30分ほど空ける• 鼻腔ぬぐい液
医療従事者の管理下であれば、被検者自身が検体採取可
検出感度は 鼻咽頭ぬぐい液と比較するとやや低い (8-9割程度)

8788• 唾液検査は発症９日以内が適応※1：発症2日目から9日目以内の有症状者の確定診断に用いられる。 ※2：有症状者への使用は研究中。無症状者への使用は研究を予定している。
※3：使用可能だが、陰性の場合は鼻咽頭PCR検査を行う必要あり。（△）※4：推奨されない。（－）＊：引き続き検討が必要であるものの、有用な検体である。

唾液を用いたPCR検査に係る厚生労働科学研究の結果について
https://www.mhlw.go.jp/content/10906000/000635988.pdf

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2020/11/26

TEN POINTS OF IMPORTANCE からまとめ• Diagnostic Stewardship:良い微生物診断を行い抗菌薬の適正使用を図る正しい検査
正しい患者
正しいタイミング

正しい解釈
正しい抗菌薬正しいタイミング

1. 質の高い検体の提出
2. 常在病原体と原因病原体の見極めを
3. 喀痰や表在性創傷検体は常在細菌叢の影響を可能な限り避ける。
4. 検体は原則としてスワブではなく、組織・吸引物や体液等を用いる。
5. 検査室は適切な手順で検査を行う．
6. 検体は抗菌薬投与前に採取する．
7. 感受性検査は，臨床的意義が明らかな分離菌株に対してのみ行う．
8. 検査結果は，正確，有意，臨床的意義があるものを報告する
9. 技術的な方針は検査室が決定し、多職種とのコミュニケーションと相互尊重で協調的な方針決定につながる
10.検体のラベリングは適切に行う．
A Guide to Utilization of the Microbiology Laboratory for Diagnosis of Infectious Diseases:
2018 Update by IDSA and ASM

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