NovaLisa®

SARS-CoV-2 (COVID-19) IgG
ELISA
Only for in-vitro diagnostic use

English .......................................................................................................................................................................... 2
Deutsch ......................................................................................................................................................................... 8Français ......................................................................................................................................................................14
Italiano ........................................................................................................................................................................20
Español .......................................................................................................................................................................26
Português ....................................................................................................................................................................32
Bibliography / Literatur / Bibliographie / Bibliografia / Bibliografía / Bibliografia .........................................................38
Abbreviations / Abkürzungen / Abréviations / Abbreviazioni / Abreviaciónes / Abreviaturas .....................................38
Symbols Key / Symbolschlüssel / Explication des Symboles / Legenda / Símbolos / Tabela de símbolos ...............39
Summary of Test Procedure / Kurzanleitung Testdurchführung / Résumé de la procedure de test / Schema dellaprocedura / Resumen de la técnica / Resumo do Procedimento de Teste ................................................................40

Product Number:

COVG0940 (96 Determinations)

ENGLISH
1. INTRODUCTION
End of 2019, a novel respiratory disease emerged in the city of Wuhan, Hubei Province of the People’s Republic of China, andsoon spread rapidly within the country and worldwide. The causative agent was identified as severe acute respiratory syndrome
coronavirus 2 (SARS-CoV-2). SARS-CoV-2 (2019-nCoV), like the closely related SARS coronavirus (SARS-CoV), belongs to thegenus Betacoronavirus within the family of coronaviruses. The zoonotic reservoir of the virus appears to be bats.
Coronaviruses are enveloped, positive single‐stranded large RNA viruses that infect humans, but also a wide range of animals.
The common human coronaviruses NL63, 229E, OC43 and HKU1 are widespread especially throughout the winter months. They
are responsible for up to one third of all acute respiratory diseases, typically with mild symptoms (common cold). More than 80 %of the adult population have antibodies against human coronaviruses. The immunity from previous infections lasts only for a shortperiod of time. Therefore, reinfections with the same pathogen are possible just after one year.
SARS-CoV-2 is predominantly transmitted by droplet infection via coughing or sneezing and through close contact with infectedpatients. In theory, smear infection and infection through the conjunctiva of the eyes are also possible.
The incubation period is in the median 5–6 days (and up to 14 days maximum).
The clinical manifestations of SARS‐CoV‐2‐related COVID-19 disease include fever, cough, respiratory problems and fatigue. In
most patients the infection manifests with symptoms of a mild febrile illness with irregular lung infiltrates.
The initial clinical sign of COVID‐19 which allowed case detection was pneumonia. But it turned out that the course of the disease
is non-specific and varies widely, from asymptomatic courses to severe pneumonia with lung failure and death. However, basedon current knowledge, around 80 % of the illnesses are mild to moderate.
Although severe courses of the disease also occur in in younger patients and people without previous illness, the following groupsof people have an increased risk of serious forms of the disease: elderly people (with a steadily increasing risk from around 5060 years of age), smokers and people with certain diseases of the cardiovascular system or the lungs, patients with chronic liverdiseases, diabetes mellitus, cancer, or patients with a weakened immune system (e.g. due to immune deficiencies or by taking
drugs that suppress the immune system).
Currently, there is no specific treatment or vaccine available against SARS-CoV-2 infection.
Species
SARS-CoV-2(severe acuterespiratory
syndrome
coronavirus 2)

DiseaseSymptoms e.g.

Transmission route

COVID-19

the course of the disease is unspecific,
diverse and varies greatly, fromasymptomatic courses to severe pneumonia
with lung failure and death

primary mode of transmission: droplet
infection;
smear infections and infections via theconjunctiva of the eyes aretheoretically possible

The presence of pathogen or infection may be identified by▪
Nucleic acid testing (NAT):
e.g. RT-PCR▪
Serology:
detection of antibodies by e.g. ELISA

2. INTENDED USE
The SARS-CoV-2 (COVID-19) IgG ELISA is intended for the qualitative determination of IgG class antibodies against
SARS-CoV-2 in human serum or plasma (citrate, heparin) to support the diagnosis of COVID-19 disease and constitutes a
supplement to direct pathogen detection. In addition, serology can be used to collect epidemiological information on the prevalenceof SARS-CoV-2.

3. PRINCIPLE OF THE ASSAY
The qualitative immunoenzymatic determination of specific antibodies is based on the ELISA (Enzyme-linked Immunosorbent
Assay) technique.
Microtiterplates are coated with specific antigens to bind corresponding antibodies of the sample. After washing the wells to
remove all unbound sample material a horseradish peroxidase (HRP) labelled conjugate is added. This conjugate binds to thecaptured antibodies. In a second washing step unbound conjugate is removed. The immune complex formed by the boundconjugate is visualized by adding Tetramethylbenzidine (TMB) substrate which gives a blue reaction product.
The intensity of this product is proportional to the amount of specific antibodies in the sample. Sulphuric acid is added to stop thereaction. This produces a yellow endpoint colour. Absorbance at 450/620 nm is read using an ELISA Microtiterplate reader.

2

4. MATERIALS
4.1.

Reagents supplied▪
▪

Microtiterplate: 12 break-apart 8-well snap-off strips coated with SARS-CoV-2 antigens; in resealable aluminium foil.
IgG Sample Dilution Buffer: 1 bottle containing 100 mL of phosphate buffer (10 mM) for sample dilution; pH 7.2 ± 0.2;
coloured yellow; ready to use; white cap; ≤ 0.0015 % (v/v) CMIT/MIT (3:1).
Stop Solution: 1 bottle containing 15 mL sulphuric acid, 0.2 mol/L; ready to use; red cap.
Washing Buffer (20x conc.): 1 bottle containing 50 mL of a 20-fold concentrated phosphate buffer (0.2 M), pH 7.2 ± 0.2,
for washing the wells; white cap.
Conjugate: 1 bottle containing 20 mL of peroxidase labelled antibody to human IgG in phosphate buffer (10 mM);coloured blue; ready to use; black cap.
TMB Substrate Solution: 1 bottle containing 15 mL 3,3',5,5'-tetramethylbenzidine (TMB), < 0.1 %; ready to use; yellow
cap.
Positive Control: 1 vial containing 2 mL control; coloured yellow; ready to use; red cap; ≤ 0.02 % (v/v) MIT.
Cut-off Control: 1 vial containing 3 mL control; coloured yellow; ready to use; green cap; ≤ 0.02 % (v/v) MIT.
Negative Control: 1 vial containing 2 mL control; coloured yellow; ready to use; blue cap; ≤ 0.0015 % (v/v) CMIT/ MIT(3:1).

▪
▪
▪
▪
▪
▪
▪

For hazard and precautionary statements see 12.1
For potential hazardous substances please check the safety data sheet.

4.2.

Materials supplied▪
▪
▪

1 Cover foil
1 Instruction for use (IFU)
1 Plate layout

4.3.

Materials and Equipment needed

▪
▪
▪
▪
▪
▪
▪

ELISA Microtiterplate reader, equipped for the measurement of absorbance at 450/620 nm
Incubator 37 °C
Manual or automatic equipment for rinsing Microtiterplate wells
Pipettes to deliver volumes between 10 and 1000 µL
Vortex tube mixer
Distilled water
Disposable tubes

5. STABILITY AND STORAGE
Store the kit at 2...8 °C. The opened reagents are stable up to the expiry date stated on the label when stored at 2...8 °C.

6. REAGENT PREPARATION
It is very important to bring all reagents and samples to room temperature (20…25 °C) and mix them before starting
the test run!

6.1.

Microtiterplate

The break-apart snap-off strips are coated with SARS-CoV-2 antigens. Immediately after removal of the strips, the remaining
strips should be resealed in the aluminium foil along with the desiccant supplied and stored at 2...8 °C.

6.2.

Washing Buffer (20x conc.)

Dilute Washing Buffer 1 + 19; e. g. 10 mL Washing Buffer + 190 mL distilled water. The diluted buffer is stable for 5 days at room
temperature (20…25 °C). In case crystals appear in the concentrate, warm up the solution to 37 °C e.g. in a water bath. Mix wellbefore dilution.

6.3.

TMB Substrate Solution

The reagent is ready to use and has to be stored at 2...8 °C, away from the light. The solution should be colourless or could havea slight blue tinge. If the substrate turns into blue, it may have become contaminated and should be thrown away.

7. SAMPLE COLLECTION AND PREPARATION
Use human serum or plasma (citrate, heparin) samples with this assay. If the assay is performed within 5 days after sample
collection, the samples should be kept at 2...8 °C; otherwise they should be aliquoted and stored deep-frozen (-70…-20 °C). If
samples are stored frozen, mix thawed samples well before testing. Avoid repeated freezing and thawing.
Heat inactivation of samples is not recommended.

7.1.

Sample Dilution

Before assaying, all samples should be diluted 1+100 with IgG Sample Dilution Buffer. Dispense 10 µL sample and 1 mL IgG
Sample Dilution Buffer into tubes to obtain a 1+100 dilution and thoroughly mix with a Vortex.

3

8. ASSAY PROCEDURE
Please read the instruction for use carefully before performing the assay. Result reliability depends on strict adherence to the
instruction for use as described. The following test procedure is only validated for manual procedure. If performing the test on
ELISA automatic systems we recommend increasing the washing steps from three up to five and the volume of Washing Bufferfrom 300 µL to 350 µL to avoid washing effects. Pay attention to chapter 12. Prior to commencing the assay, the distribution andidentification plan for all samples and standards/controls (duplicates recommended) should be carefully established on the platelayout supplied in the kit. Select the required number of microtiter strips or wells and insert them into the holder.
Perform all assay steps in the order given and without any delays.
A clean, disposable tip should be used for dispensing each standard/control and sample.
Adjust the incubator to 37 ± 1 °C.
1. Dispense 100 µL standards/controls and diluted samples into their respective wells. Leave well A1 for the Substrate
Blank.
2. Cover wells with the foil supplied in the kit.
3. Incubate for 1 hour ± 5 min at 37 ± 1 °C.
4. When incubation has been completed, remove the foil, aspirate the content of the wells and wash each well three times
with 300 µL of Washing Buffer. Avoid overflows from the reaction wells. The interval between washing and aspiration
should be > 5 sec. At the end carefully remove remaining fluid by tapping strips on tissue paper prior to the next step!
Note:
Washing is important! Insufficient washing results in poor precision and false results.
5. Dispense 100 µL Conjugate into all wells except for the Substrate Blank well A1.
6. Incubate for 30 min at room temperature (20...25 °C). Do not expose to direct sunlight.
7. Repeat step 4.
8. Dispense 100 µL TMB Substrate Solution into all wells.
9. Incubate for exactly 15 min at room temperature (20...25 °C) in the dark. A blue colour occurs due to an enzymatic
reaction.
10. Dispense 100 µL Stop Solution into all wells in the same order and at the same rate as for the TMB Substrate Solution,
thereby a colour change from blue to yellow occurs.
11. Measure the absorbance at 450/620 nm within 30 min after addition of the Stop Solution.

8.1.

Measurement

Adjust the ELISA Microtiterplate reader to zero using the Substrate Blank.
If - due to technical reasons - the ELISA Microtiterplate reader cannot be adjusted to zero using the Substrate Blank, subtract its
absorbance value from all other absorbance values measured in order to obtain reliable results!
Measure the absorbance of all wells at 450 nm and record the absorbance values for each standard/control and sample in theplate layout.
Bichromatic measurement using a reference wavelength of 620 nm is recommended.
Where applicable calculate the mean absorbance values of all duplicates.

9. RESULTS
9.1.

Run Validation Criteria

In order for an assay to be considered valid, the following criteria must be met:▪
Substrate Blank:
Absorbance value < 0.100▪
Negative Control:
Absorbance value < 0.200 and < Cut-off▪
Cut-off Control:
Absorbance value 0.150 – 1.300▪
Positive Control:
Absorbance value > Cut-off
If these criteria are not met, the test is not valid and must be repeated.

9.2.

Calculation of Results

The Cut-off is the mean absorbance value of the Cut-off Control determinations.
Example:Absorbance value Cut-off Control 0.44 + absorbance value Cut-off control 0.42 = 0.86 / 2 = 0.43
Cut-off = 0.43

9.2.1.

Results in Units [NTU]

Sample (mean) absorbance value x 10 = [NovaTec Units = NTU]
Cut-off
Example: 1.591 x 10 = 37 NTU (Units)
0.43

4

9.3.

Interpretation of Results

Cut-off

10 NTU-

Positive> 11 NTU

Antibodies against the pathogen are present.
There has been a contact with the antigen (pathogen resp. vaccine).

Equivocal

9 – 11 NTU

Antibodies against the pathogen could not be detected clearly.
It is recommended to repeat the test with a fresh sample in 2 to 4 weeks. If the result
is equivocal again the sample is judged as negative.

Negative< 9 NTU

The sample contains no antibodies against the pathogen.
A previous contact with the antigen (pathogen resp. vaccine) is unlikely.

Diagnosis of an infectious disease should not be established on the basis of a single test result. A precise diagnosis shouldtake into consideration clinical history, symptomatology as well as serological data.
In immunocompromised patients and newborns serological data only have restricted value.

9.3.1.

Antibody Isotypes and State of Infection

Serology

Significance

IgM

Characteristic of the primary antibody responseHigh IgM titer: → suggests a current or very recent infection

IgG

Follows IgM production
Characteristic of the secondary antibody response
May persist for several years
High IgG titer with low IgM titer: → may indicate past infection

IgA

Produced in mucosal linings throughout the body (⇒ protective barrier)
Usually produced early in the course of the infection

10. SPECIFIC PERFORMANCE CHARACTERISTICS
The results refer to the groups of samples investigated; these are not guaranteed specifications.
For further information about the specific performance characteristics please contact NovaTec Immundiagnostica GmbH.

10.1. Precision
Intraassay
#1
#2
#3

n
24
24
24

Mean (E)
0.815
0.782
0.362

CV (%)
4.06
4.28
8.71

Interassay
#1
#2
#3

n
12
12
12

Mean (NTU)
16.43
12.76
7.05

CV (%)
7.37
4.11
8.65

10.2. Diagnostic Specificity
The diagnostic specificity is defined as the probability of the assay of scoring negative in the absence of the specific analyte.
SARS-CoV-2 infections emerged in December 2019 in Wuhan, China. The expected prevalence values for German and US blood
donor panels from before December 2019 therefore amount to 0 %.
The determined positive results correspond to a specificity of 99.24 % (95 %-confidence interval: 95.82 % - 99.98 %).
Sample Panel
Blood donors Germany
Blood donors US
Total

Number of samples (n)
83
50
133

Positive Equivocal
0
1
1
0
1
1

Negative
82
49
131

Specificity
100 %98.00 %
99.24 %

95 % CI

95.82 % - 99.98 %10.3. Diagnostic Sensitivity
The diagnostic sensitivity is defined as the probability of the assay of scoring positive in the presence of the specific analyte.
42 samples from 25 patients tested positive for SARS-CoV-2 RNA by RT-PCR were tested.
Days post symptom onset
0-5
6-8
9-11
≥ 12

Number ofsamples (n)
13
10
10
9

Positive

Equivocal

Negative

1
4
4
9

0
0
0
0

12
6
6
0

5

Sensitivity(Eqv excluded)
7.69 %
40.00 %
40.00 %
100 %

10.4. Interferences
Three clinical samples exhibiting differing reactivities were tested for interference with each substance listed in the Table below:
a positive, a negative, and an equivocal sample. All samples exhibited a change of signal less than 15 % when tested with eachpotential interferant.
Interferant

Concentration tested

Albumin
Bilirubin conjugatedBilirubin unconjugated
Cholesterol
Hemoglobin
Triglycerides

60 mg/mL
0.4 mg/mL
0.4 mg/mL
4 mg/mL
10 mg/mL
15 mg/mL

10.5. Cross Reactivity
131 samples with antibody activities to potentially cross reacting parameters (including antibodies to several respiratory
pathogens) were tested to evaluate the cross reactivity of the assay.
Samples positive for antibodies toAdenovirus
Parainfluenzavirus
Candida albicans
Bordetella pertussis
Influenzavirus A
Influenzavirus B
Enterovirus
Respiratory syncytial virus
Chlamydia pneumoniae
Legionella pneumophila
Mycoplasma pneumoniae
Haemophilus influenzae
Coronavirus, other than SARS-CoV-2
Rheumatoid Factor positive

Number of samples (n)
10
9
8
9
9
10
10
10
9
8
9
3
1
26

Positive
0
0
0
0
0
0
0
1
0
0
0
0
0
0

Equivocal
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0

Negative
10
9
8
9
9
10
10
9
9
8
9
3
1
26

Cross reactions with antibodies to respiratory syncytial virus cannot be excluded. Cross reactivity with other human coronaviruses
should be considered for result interpretation.

11. LIMITATIONS OF THE PROCEDURE
Bacterial contamination or repeated freeze-thaw cycles of the sample may affect the absorbance values.

12. PRECAUTIONS AND WARNINGS
▪

▪
▪
▪
▪
▪
▪
▪
▪
▪
▪
▪
▪

In compliance with article 1 paragraph 2b European directive 98/79/EC the use of the in vitro diagnostic medical devices isintended by the manufacturer to secure suitability, performances and safety of the product. Therefore the test procedure, theinformation, the precautions and warnings in the instructions for use have to be strictly followed. The use of the testkits withanalyzers and similar equipment has to be validated. Any change in design, composition and test procedure as well as forany use in combination with other products not approved by the manufacturer is not authorized; the user himself is
responsible for such changes. The manufacturer is not liable for false results and incidents for these reasons. The
manufacturer is not liable for any results by visual analysis of the patient samples.
Only for in-vitro diagnostic use.
All materials of human or animal origin should be regarded and handled as potentially infectious.
All components of human origin used for the production of these reagents have been tested for anti-HIV antibodies, antiHCV antibodies and HBsAg and have been found to be non-reactive.
Do not interchange reagents or Microtiterplate strips of different production lots.
No reagents of other manufacturers should be used along with reagents of this test kit.
Do not use reagents after expiry date stated on the label.
Use only clean pipette tips, dispensers, and lab ware.
Do not interchange screw caps of reagent vials to avoid cross-contamination.
Close reagent vials tightly immediately after use to avoid evaporation and microbial contamination.
After first opening and subsequent storage check conjugate and standard/control vials for microbial contamination prior tofurther use.
To avoid cross-contamination and falsely elevated results pipette patient samples and dispense reagents without splashingaccurately into the wells.
The ELISA is only designed for qualified personnel who are familiar with good laboratory practice.

612.1. Safety note for reagents containing hazardous substances
Reagents may contain CMIT/MIT (3:1) or MIT (refer to 4.1)
Therefore, the following hazard and precautionary statements apply.
Warning

H317
P261
P280
P302+P352
P333+P313
P362+P364

May cause an allergic skin reaction.
Avoid breathing spray
Wear protective gloves/protective clothing.
IF ON SKIN: Wash with plenty of soap and water.
If skin irritation or rash occurs: Get medical advice/attention.
Take off contaminated and Wash it before reuse.

Further information can be found in the safety data sheet.

12.2. Disposal Considerations
Residues of chemicals and preparations are generally considered as hazardous waste. The disposal of this kind of waste isregulated through national and regional laws and regulations. Contact your local authorities or waste management companies
which will give advice on how to dispose hazardous waste.

13. ORDERING INFORMATION
Prod. No.:

COVG0940

SARS-CoV-2 (COVID-19) IgG (96 Determinations)7DEUTSCH
1. EINLEITUNG
Ende 2019 trat in der Stadt Wuhan, Provinz Hubei, Volksrepublik China, eine neuartige Atemwegserkrankung auf, die sich schonbald innerhalb des Landes und rasch weltweit ausbreitete. Als Erreger wurde das SARS-CoV-2 (“Schweres akutes
Atemwegssyndrom Coronavirus 2”) identifiziert. SARS-CoV-2 (2019-nCoV) gehört, wie das eng verwandte SARS-Coronavirus(SARS-CoV), zur Gattung der Betacoronaviren innerhalb der Familie der Coronaviren. Das zoonotische Reservoir des Virus sindanscheinende Fledermäuse.
Coronaviren sind große, von einer Lipidhülle umgebene RNA-Viren mit einzelsträngigem Plus-Strang-Genom, die den Menschen,aber auch eine Vielzahl von Tieren infizieren. Die bekannten humanen Coronaviren NL63, 229E, OC43 und HKU1 sind vor allemin den Wintermonaten weit verbreitet. Sie sind für bis zu ein Drittel aller akuten Atemwegserkrankungen verantwortlich und führen
typischerweise zu leichten Symptomen (Erkältung). Bei mehr als 80 % der erwachsenen Bevölkerung lassen sich Antikörper
gegen humane Coronaviren nachweisen. Die Immunität gegenüber früheren Infektionen hält nur für eine kurze Zeit an.
Reinfektionen mit dem gleichen Erreger sind daher bereits nach einem Jahr möglich.
SARS-CoV-2 wird vorwiegend durch Tröpfcheninfektion über Husten oder Niesen und durch engen Kontakt mit infizierten
Personen übertragen. Theoretisch sind auch Schmierinfektionen und Infektionen über die Bindehaut der Augen möglich.
Die Inkubationszeit liegt im Median bei 5-6 Tagen (und maximal bei bis zu 14 Tagen).
Zu den klinischen Manifestationen der SARS-CoV-2-assoziierten COVID-19 Erkrankung zählen Fieber, Husten,
Atembeschwerden und Müdigkeit. Bei den meisten Patienten manifestiert sich die Infektion mit Symptomen einer leichten
fieberhaften Erkrankung mit irregulären Lungeninfiltraten.
Das ursprüngliche klinische Anzeichen von COVID-19, das eine Diagnose ermöglichte, war Lungenentzündung. Es stellte sichjedoch heraus, dass der Krankheitsverlauf unspezifisch ist und stark variiert: von asymptomatischen Verläufen bis hin zu einer
schweren Lungenentzündung mit Lungenversagen und Tod. Nach heutigem Kenntnisstand sind jedoch etwa 80 % der
Erkrankungen leicht bis moderat.
Obwohl schwere Krankheitsverläufe auch bei jüngeren Patienten und Menschen ohne Vorerkrankungen auftreten, haben
folgende Personengruppen ein erhöhtes Risiko für schwere Erkrankungsformen: ältere Menschen (mit einem stetig steigenden
Risiko ab etwa 50-60 Jahren), Raucher und Menschen mit bestimmten Erkrankungen des Herz-Kreislauf-Systems oder der
Lunge, Patienten mit chronischen Lebererkrankungen, Diabetes mellitus, Krebs oder Patienten mit einem geschwächten
Immunsystem (z.B. durch Immunschwäche oder durch die Einnahme von Medikamenten, die das Immunsystem unterdrücken).
Gegenwärtig gibt es keine spezifische Behandlung oder einen Impfstoff gegen eine SARS-CoV-2-Infektion.
Spezies

Erkrankung

SARS-CoV-2(“Schweres akutes
COVID-19
Atemwegssyndrom
Coronavirus 2”)

Symptome (z.B.)
Der Krankheitsverlauf ist unspezifisch, vielfältig
und variiert stark, von asymptomatischen
Verläufen bis hin zu schwerer Lungenentzündung
mit Lungenversagen und Tod

Infektionsweg
Primärer Übertragungsweg:
Tröpfcheninfektion;
Schmierinfektionen und
Infektionen über die Bindehaut
der Augen sind theoretischmöglichNachweis des Erregers bzw. der Infektion durch:▪
Nukleinsäure-Nachweis: z.B. RT-PCR▪
Serologie:
Nachweis von Antikörpern durch z.B. ELISA

2. VERWENDUNGSZWECKDer SARS-CoV-2 (COVID-19) IgG ELISA ist für den qualitativen Nachweis spezifischer IgG-Antikörper gegen SARS-CoV-2 inhumanem Serum oder Plasma (Citrat, Heparin) bestimmt, um die Diagnose der COVID-19-Erkrankung zu unterstützen, und stellteine Ergänzung zum direkten Erregernachweis dar. Darüber hinaus kann die Serologie verwendet werden, um epidemiologische
Informationen über die Prävalenz von SARS-CoV-2 zu sammeln.

3. TESTPRINZIP
Die qualitative immunenzymatische Bestimmung von spezifischen Antikörpern beruht auf der ELISA (Enzyme-linked
Immunosorbent Assay) Technik.
Die Mikrotiterplatten sind mit spezifischen Antigenen beschichtet, an welche die korrespondierenden Antikörper aus der Probebinden. Ungebundenes Probenmaterial wird durch Waschen entfernt. Anschließend erfolgt die Zugabe eines MeerrettichPeroxidase (HRP) Konjugates. Dieses Konjugat bindet an die an der Mikrotiterplatte gebundenen spezifischen Antikörper. In
einem zweiten Waschschritt wird ungebundenes Konjugat entfernt. Die Immunkomplexe, die durch die Bindung des Konjugates
entstanden sind, werden durch die Zugabe von Tetramethylbenzidin (TMB)-Substratlösung und eine resultierende Blaufärbung
nachgewiesen.
Die Intensität des Reaktionsproduktes ist proportional zur Menge der spezifischen Antikörper in der Probe. Die Reaktion wird mit
Schwefelsäure gestoppt, wodurch ein Farbumschlag von blau nach gelb erfolgt. Die Absorption wird bei 450/620 nm mit einem
Mikrotiterplatten-Photometer gemessen.

84. MATERIALIEN
4.1.

Mitgelieferte Reagenzien▪

Mikrotiterplatte: 12 teilbare 8er-Streifen, beschichtet mit SARS-CoV-2 Antigenen; in wieder verschließbarem
Aluminiumbeutel.
▪
IgG-Probenverdünnungspuffer: 1 Flasche mit 100 mL Phosphatpuffer (10 mM) zur Probenverdünnung; pH 7,2 ± 0,2;
gelb gefärbt; gebrauchsfertig; weiße Verschlusskappe; ≤ 0,0015 % (v/v) CMIT/ MIT (3:1).
▪
Stopplösung: 1 Flasche mit 15 mL Schwefelsäure, 0,2 mol/L; gebrauchsfertig; rote Verschlusskappe.
▪
Waschpuffer (20x konz.): 1 Flasche mit 50 mL eines 20-fach konzentrierten Phosphatpuffers (0,2 M), zum Waschen
der Kavitäten; pH 7,2 ± 0,2; weiße Verschlusskappe.
▪
Konjugat: 1 Flasche mit 20 mL Peroxidase-konjugierten Antikörpern gegen humanes IgG in Phosphatpuffer (10 mM);
blau gefärbt; gebrauchsfertig; schwarze Verschlusskappe.
▪
TMB-Substratlösung: 1 Flasche mit 15 mL 3,3`,5,5`-Tetramethylbenzidin (TMB), < 0,1 %; gebrauchsfertig; gelbe
Verschlusskappe.
▪
Positivkontrolle: 1 Fläschchen mit 2 mL Kontrolle; gelb gefärbt; rote Verschlusskappe; gebrauchsfertig. ≤ 0.02 % (v/v)
MIT.
▪
Cut-off Kontrolle: 1 Fläschchen mit 3 mL Kontrolle; gelb gefärbt; grüne Verschlusskappe; gebrauchsfertig. ≤ 0,02 %(v/v) MIT.
▪
Negativkontrolle: 1 Fläschchen mit 2 mL Kontrolle; gelb gefärbt; blaue Verschlusskappe; gebrauchsfertig; ≤ 0,0015 %(v/v) CMIT/ MIT (3:1).
Für Gefahren- und Sicherheitshinweise siehe 12.1.
Für potenzielle Gefahrstoffe überprüfen Sie bitte das Sicherheitsdatenblatt.

4.2.

Mitgeliefertes Zubehör▪
▪
▪

1 selbstklebende Abdeckfolie
1 Arbeitsanleitung
1 Plattenlayout

4.3.

Erforderliche Materialien und Geräte

▪
▪
▪
▪
▪
▪
▪

Mikrotiterplatten-Photometer mit Filtern 450/620 nm
Inkubator 37 °C
Manuelle oder automatische Waschvorrichtung für Mikrotiterplatten
Mikropipetten (10 - 1000 µL)
Vortex-Mischer
Destilliertes Wasser
Plastikröhrchen für den einmaligen Gebrauch

5. STABILITÄT UND LAGERUNG
Testkit bei 2...8 °C lagern. Die geöffneten Reagenzien sind bis zu den auf den Etiketten angegebenen Verfallsdaten verwendbar,
wenn sie bei 2...8 °C gelagert werden.

6. VORBEREITUNG DER REAGENZIEN
Es ist sehr wichtig, alle Reagenzien und Proben vor ihrer Verwendung auf Raumtemperatur (20...25 °C) zu bringen
und zu mischen!

6.1.

Mikrotiterplatte

Die abbrechbaren Streifen sind mit SARS-CoV-2 Antigenen beschichtet. Nicht verbrauchte Vertiefungen im Aluminiumbeutel
zusammen mit dem Trockenmittel sofort wieder verschließen und bei 2...8 °C lagern.

6.2.

Waschpuffer (20x konz.)

Der Waschpuffer ist im Verhältnis 1 + 19 zu verdünnen; z.B. 10 mL Waschpuffer + 190 mL destilliertes Wasser.
Der verdünnte Puffer ist bei Raumtemperatur (20…25 °C) 5 Tage haltbar. Sollten Kristalle im Konzentrat auftreten, die Lösung
z.B. in einem Wasserbad auf 37 °C erwärmen und vor dem Verdünnen gut mischen.

6.3.

TMB-Substratlösung

Die gebrauchsfertige Lösung ist bei 2...8 °C vor Licht geschützt aufzubewahren. Die Lösung ist farblos, kann aber auch leicht
hellblau sein. Sollte die TMB-Substratlösung blau sein, ist sie kontaminiert und kann nicht im Test verwendet werden.

7. ENTNAHME UND VORBEREITUNG DER PROBEN
Es sollten humane Serum- oder Plasmaproben (Citrat, Heparin) verwendet werden. Werden die Bestimmungen innerhalb von
5 Tagen nach Blutentnahme durchgeführt, können die Proben bei 2...8 °C aufbewahrt werden, sonst aliquotieren und tiefgefrieren(-70…-20 °C). Wieder aufgetaute Proben vor dem Verdünnen gut schütteln. Wiederholtes Tiefgefrieren und Auftauen vermeiden!
Hitzeinaktivierung der Proben wird nicht empfohlen.

9

7.1.

Probenverdünnung

Proben vor Testbeginn im Verhältnis 1 + 100 mit IgG-Probenverdünnungspuffer verdünnen, z.B. 10 µL Probe und 1 mL IgGProbenverdünnungspuffer in die entsprechenden Röhrchen pipettieren, um eine Verdünnung von 1 + 100 zu erhalten; gut
mischen (Vortex).

8. TESTDURCHFÜHRUNG
Arbeitsanleitung vor Durchführung des Tests sorgfältig lesen. Für die Zuverlässigkeit der Ergebnisse ist es notwendig, die
Arbeitsanleitung genau zu befolgen. Die folgende Testdurchführung ist für die manuelle Methode validiert. Beim Arbeiten mit
ELISA Automaten empfehlen wir, um Wascheffekte auszuschließen, die Zahl der Waschschritte von drei auf bis zu fünf und das
Volumen des Waschpuffers von 300 µL auf 350 µL zu erhöhen. Kapitel 12 beachten. Vor Testbeginn auf dem mitgelieferten
Plattenlayout die Verteilung bzw. Position der Proben und der Standards/Kontrollen (Doppelbestimmung empfohlen) genau
festlegen. Die benötigte Anzahl von Mikrotiterstreifen (Kavitäten) in den Streifenhalter einsetzen.
Den Test in der angegebenen Reihenfolge und ohne Verzögerung durchführen.
Für jeden Pipettierschritt der Standards/Kontrollen und Proben saubere Einmalspitzen verwenden.
Den Inkubator auf 37  1 °C einstellen.
1.

Je 100 µL Standards/Kontrollen und vorverdünnte Proben in die entsprechenden Vertiefungen pipettieren. Vertiefung A1
ist für den Substratleerwert vorgesehen.
2. Die Streifen mit der mitgelieferten Abdeckfolie bedecken.
3. 1 h ± 5 min bei 37 °C inkubieren.
4. Am Ende der Inkubationszeit Abdeckfolie entfernen und die Inkubationsflüssigkeit aus den Teststreifen absaugen.
Anschließend dreimal mit 300 µL Waschpuffer waschen. Überfließen von Flüssigkeit aus den Vertiefungen vermeiden.
Das Intervall zwischen Waschen und Absaugen sollte > 5 sec betragen. Nach dem Waschen die Teststreifen auf
Fließpapier ausklopfen, um die restliche Flüssigkeit zu entfernen.
Beachte: Der Waschvorgang ist wichtig, da unzureichendes Waschen zu schlechter Präzision und falschen
Messergebnissen führt!
5. 100 µL Konjugat in alle Vertiefungen, mit Ausnahme der für die Berechnung des Leerwertes A1 vorgesehenen,
pipettieren.
6. 30 min bei Raumtemperatur (20...25 °C) inkubieren. Nicht dem direkten Sonnenlicht aussetzen.
7. Waschvorgang gemäß Punkt 4 wiederholen.
8. 100 µL TMB-Substratlösung in alle Vertiefungen pipettieren.
9. Genau 15 min im Dunkeln bei Raumtemperatur (20...25 °C) inkubieren. Bei enzymatischer Reaktion findet eine
Blaufärbung statt.
10. In alle Vertiefungen 100 µL Stopplösung in der gleichen Reihenfolge und mit den gleichen Zeitintervallen wie bei Zugabe
der TMB-Substratlösung pipettieren, dadurch erfolgt ein Farbwechsel von blau nach gelb.
11. Die Extinktion der Lösung in jeder Vertiefung bei 450/620 nm innerhalb von 30 min nach Zugabe der Stopplösung
messen.

8.1.

Messung

Mit Hilfe des Substratleerwertes den Nullabgleich des Mikrotiterplatten-Photometers vornehmen.
Falls diese Eichung aus technischen Gründen nicht möglich ist, muss nach der Messung der Extinktionswert desSubstratleerwertes von allen anderen Extinktionswerten subtrahiert werden, um einwandfreie Ergebnisse zu erzielen!
Extinktion aller Kavitäten bei 450 nm messen und die Messwerte der Standards/Kontrollen und Proben in das Plattenlayout
eintragen.
Eine bichromatische Messung mit der Referenzwellenlänge 620 nm wird empfohlen.
Falls Doppel- oder Mehrfachbestimmungen durchgeführt wurden, den Mittelwert der Extinktionswerte berechnen.

9. BERECHNUNG DER ERGEBNISSE
9.1.

Testgültigkeitskriterien

Der Test wurde richtig durchgeführt, wenn er folgende Kriterien erfüllt:▪
Substrat-Leerwert:
Extinktionswert< 0,100▪
Negativkontrolle:
Extinktionswert< 0,200 und < Cut-off▪
Cut-off Kontrolle:
Extinktionswert
0,150 – 1,300▪
Positivkontrolle:
Extinktionswert> Cut-offSind diese Kriterien nicht erfüllt, ist der Testlauf ungültig und muss wiederholt werden.

9.2.

Messwertberechnung

Der Cut-off ergibt sich aus dem Mittelwert der gemessenen Extinktionen der Cut-off Kontrolle.
Beispiel: 0,44 OD Cut-off Kontrolle + 0,42 OD Cut-off Kontrolle = 0,86 : 2 = 0,43
Cut-off = 0,43

10

9.2.1.

Ergebnisse in Einheiten [NTU]

Mittlere Extinktion der Probe x 10
Cut-off=[NovaTec Einheiten = NTU]

Beispiel: 1,591 x 10 = 37 NTU
0,43

9.3.

Interpretation der Ergebnisse

Cut-off

10 NTU-

Positiv> 11 NTU

Es liegen Antikörper gegen den Erreger vor. Ein Kontakt mit dem Antigen(Erreger bzw. Impfstoff) hat stattgefunden.

Grenzwertig

9 – 11 NTU

Antikörper gegen den Erreger können nicht eindeutig nachgewiesen werden.
Es wird empfohlen den Test nach 2 bis 4 Wochen mit einer frischen
Patientenprobe zu wiederholen. Finden sich die Ergebnisse erneut im
grenzwertigen Bereich, gilt die Probe als negativ.

Negativ< 9 NTU

Es liegen keine Antikörper gegen den Erreger vor. Ein vorausgegangener
Kontakt mit dem Antigen (Erreger bzw. Impfstoff) ist unwahrscheinlich.

Die Diagnose einer Infektionskrankheit darf nicht allein auf der Basis des Ergebnisses einer Bestimmung gestellt werden. Die
anamnestischen Daten sowie die Symptomatologie des Patienten müssen zusätzlich zu den serologischen Ergebnissen in
Betracht gezogen werden. Bei Immunsupprimierten und Neugeborenen besitzen die Ergebnisse serologischer Tests nur
einen begrenzten Wert.

9.3.1.

Antikörper-Isotypen und Infektionsstatus

Serologie

Bedeutung

IgM

Typisch für Primärantwort
Hoher IgM-Titer: → Hinweis auf relativ frische Infektion

IgG

Folgt der IgM Produktion
Typisch für Sekundärantwort
Können auch noch nach mehreren Jahren nachweisbar sein
Hoher IgG-Titer bei gleichzeitig niedrigem IgM-Titer: → wahrscheinlich länger zurückliegende Infektion

IgA

Sezerniert in allen Schleimhäuten (⇒ Schutzbarriere)
Meist früh im Verlauf einer Infektion gebildet

10. TESTMERKMALE
Die Ergebnisse beziehen sich auf die untersuchten Probenkollektive; es handelt sich nicht um garantierte Spezifikationen.
Für weitere Informationen zu den Testmerkmalen kontaktieren Sie bitte NovaTec Immundiagnostica GmbH.

10.1. Präzision
Intraassay
#1
#2
#3

n
24
24
24

Mittelwert (E)
0,815
0,782
0,362

Vk (%)
4,06
4,28
8,71

Interassay
#1
#2
#3

n
12
12
12

Mittelwert (NTU)
16,43
12,76
7,05

Vk (%)
7,37
4,11
8,65

10.2. Diagnostische Spezifität
Die diagnostische Spezifität ist definiert als die Wahrscheinlichkeit des Tests, ein negatives Ergebnis bei Fehlen des spezifischen
Analyten zu liefern. SARS-CoV-2-Infektionen traten im Dezember 2019 in Wuhan, China, auf. Die erwarteten Prävalenzwerte fürdeutsche und US-amerikanische Blutspender-Panels aus der Zeit vor Dezember 2019 betragen daher 0 %.
Die ermittelten positiven Ergebnisse entsprechen einer Spezifität von 99,24 % (95 %-Konfidenzintervall: 95,82 % - 99,98 %).
AnzahlProben (n)Positiv

Grenzwertig

Negativ

Spezifität(Gw. ausgeschlossen)

Blutspender
Deutschland

83

0

1

82

100 %

Blutspender USA

50

1

0

49

98,00 %

Total

133

1

1

131

99,24 %

Probenkollektiv

11

95 % KI

95,82 % - 99,98 %10.3. Diagnostische Sensitivität
Die diagnostische Sensitivität ist definiert als die Wahrscheinlichkeit des Tests, ein positives Ergebnis bei Vorhandensein desspezifischen Analyten zu liefern. 42 Proben von 25 Patienten, die mittels RT-PCR positiv auf SARS-CoV-2 RNA getestet wurden,
wurden getestet.
Tage nach
Symptombeginn
0-5
6-8
9-11
≥ 12

AnzahlProben (n)
13
10
10
9

Positiv

Grenzwertig

Negativ

1
4
4
9

0
0
0
0

12
6
6
0

Sensitivität(Gw. ausgeschlossen)
7,69 %
40,00 %
40,00 %
100 %10.4. Interferenzen
Drei klinische Proben mit unterschiedlichen Reaktivitäten wurden auf Interferenzen mit jeder in der nachstehenden Tabelle
aufgeführten Interferenzsubstanz getestet: eine positive, eine negative und eine grenzwertige Probe. Alle Proben wiesen eine
Signaländerung von weniger als 15 % auf, wenn sie mit der jeweiligen potenziellen Interferenzsubstanz getestet wurden.
Interferenzsubstanz

Getestete Konzentration

Albumin
Bilirubin konjugiert
Bilirubin unkonjugiert
Cholesterin
Hämoglobin
Triglyceride

60 mg/mL
0,4 mg/mL
0,4 mg/mL
4 mg/mL
10 mg/mL
15 mg/mL

10.5. Kreuzreaktivität
131 Proben mit Antikörperaktivitäten gegen potenziell kreuzreagierende Parameter (einschließlich Antikörper gegen verschiedene
Atemwegserreger) wurden getestet, um die Kreuzreaktivität des Assays zu bewerten.
Proben positiv für Antikörper gegen
Adenovirus
Parainfluenzavirus
Candida albicans
Bordetella pertussis
Influenzavirus A
Influenzavirus B
Enterovirus
Respiratorisches Synzytial-Virus
Chlamydia pneumoniae
Legionella pneumophila
Mycoplasma pneumoniae
Haemophilus influenzae
Coronavirus, nicht SARS-CoV-2
Rheumafaktor positiv

n
10
9
8
9
9
10
10
10
9
8
9
3
1
26

Positiv
0
0
0
0
0
0
0
1
0
0
0
0
0
0

Grenzwertig
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0

Negativ
10
9
8
9
9
10
10
9
9
8
9
3
1
26

Kreuzreaktionen mit Antikörpern gegen das Respiratorische Synzytial-Virus (RSV) können nicht ausgeschlossen werden. Bei derInterpretation der Ergebnisse sollte eine Kreuzreaktivität mit anderen humanen Coronaviren in Betracht gezogen werden.

11. GRENZEN DES VERFAHRENS
Kontamination der Proben durch Bakterien oder wiederholtes Einfrieren und Auftauen können zu einer Veränderung der
Messwerte führen.

12. SICHERHEITSMASSNAHMEN UND WARNHINWEISE
▪

▪
▪
▪
▪

Gemäß Art. 1 Abs. 2b der EU-Richtlinie 98/79/EG legt der Hersteller die Zweckbestimmung von In-vitro-Diagnostika fest, um
deren Eignung, Leistung und Sicherheit sicherzustellen. Daher sind die Testdurchführung, die Information, die
Sicherheitsmaßnahmen und Warnhinweise in der Arbeitsanleitung strikt zu befolgen. Bei Anwendung des Testkits auf
Diagnostika-Geräten ist die Testmethode zu validieren. Jede Änderung am Aussehen, der Zusammensetzung und derTestdurchführung sowie jede Verwendung in Kombination mit anderen Produkten, die der Hersteller nicht autorisiert hat, ist
nicht zulässig; der Anwender ist für solche Änderungen selbst verantwortlich. Der Hersteller haftet für falsche Ergebnisse
und Vorkommnisse aus solchen Gründen nicht. Auch für falsche Ergebnisse aufgrund von visueller Auswertung wird keine
Haftung übernommen.
Nur für in-vitro-Diagnostik.
Alle Materialien menschlichen oder tierischen Ursprungs sind als potentiell infektiös anzusehen und entsprechend zu
behandeln.
Alle verwendeten Bestandteile menschlichen Ursprungs sind auf Anti-HIV-AK, Anti-HCV-AK und HBsAg nicht-reaktiv
getestet.
Reagenzien und Mikrotiterplatten unterschiedlicher Chargen nicht untereinander austauschen.
12

▪
▪
▪
▪
▪
▪
▪
▪

Keine Reagenzien anderer Hersteller zusammen mit den Reagenzien dieses Testkits verwenden.
Nicht nach Ablauf des Verfallsdatums verwenden.
Nur saubere Pipettenspitzen, Dispenser und Labormaterialien verwenden.
Verschlusskappen der einzelnen Reagenzien nicht untereinander vertauschen, um Kreuzkontaminationen zu vermeiden.
Flaschen sofort nach Gebrauch fest verschließen, um Verdunstung und mikrobielle Kontamination zu vermeiden.
Nach dem ersten Öffnen Konjugat und Standards/Kontrollen vor weiterem Gebrauch auf mikrobielle Kontamination prüfen.
Zur Vermeidung von Kreuzkontamination und falsch erhöhten Resultaten, Reagenzien sorgfältig in die Kavitäten pipettieren.
Der ELISA ist nur für die Anwendung durch Fachpersonal vorgesehen, welches die Arbeitstechniken einwandfrei beherrscht.

12.1. Sicherheitshinweis für Reagenzien, die Gefahrstoffe enthalten
Die Reagenzien können CMIT/MIT (3:1) oder MIT enthalten (siehe 4.1)
Daher gelten die folgenden Gefahren- und Sicherheitshinweise.
Achtung

H317
P261
P280
P302+P352
P333+P313
P362+P364

Kann allergische Hautreaktionen verursachen.
Einatmen von Aerosol vermeiden.
Schutzhandschuhe/Schutzkleidung tragen.
BEI BERÜHRUNG MIT DER HAUT: Mit viel Seife und Wasser waschen.
Bei Hautreizung oder -ausschlag: Ärztlichen Rat einholen/ärztliche Hilfe
hinzuziehen.
Kontaminierte Kleidung ausziehen und vor erneutem Tragen waschen

Weitere Informationen können dem Sicherheitsdatenblatt entnommen werden.

12.2. Entsorgungshinweise
Chemikalien und Zubereitungen sind in der Regel Sonderabfälle. Deren Beseitigung unterliegt den nationalen abfallrechtlichen
Gesetzen und Verordnungen. Die zuständige Behörde informiert über die Entsorgung von Sonderabfällen.

13. BESTELLINFORMATIONEN
Produktnummer:

COVG040

SARS-CoV-2 (COVID-19) IgG (96 Bestimmungen)

13

FRANÇAIS
1. INTRODUCTION
Fin 2019, une nouvelle maladie respiratoire est apparue dans la ville de Wuhan, dans la province de Hubei de la Républiquepopulaire de Chine, et s'est rapidement répandue dans le pays et dans le monde. L'agent causal a été identifié comme étant lecoronavirus 2 du syndrome respiratoire aigu sévère (SARS-CoV-2). Le CoV-2 du SRAS (2019-nCoV), comme le coronavirus du
SARS (CoV du SRAS) qui lui est étroitement apparenté, appartient au genre Betacoronavirus dans la famille des coronavirus. Le
réservoir zoonotique du virus semble être les chauves-souris.
Les coronavirus sont des grands virus à ARN monocaténaire, de sens positif qui infectent les humains, mais aussi un largeéventail d'animaux. Les coronavirus humains communs NL63, 229E, OC43 et HKU1 sont couramment répandus, surtout pendantles mois d'hiver. Ils sont responsables de jusqu'à un tiers de toutes les maladies respiratoires aiguës, généralement
accompagnées de symptômes légers (rhume). Plus de 80 % de la population adulte possède des anticorps contre les coronavirus
humains. L'immunité contre les infections précédentes ne dure qu'une courte période. Par conséquent, il est possible de réinfecterle même agent pathogène juste après un an.
Le SARS-CoV-2 se transmet principalement par l'infection des gouttelettes par la toux ou les éternuements et par contact étroit
avec des patients infectés. En théorie, l'infection par frottis et l'infection par la conjonctive des yeux sont également possibles.
La période d'incubation moyenne est de l'ordre de 5 à 6 jours (et peut aller jusqu'à 14 jours maximum).
Les manifestations cliniques de la maladie COVID-19 liée au SARS-CoV-2 comprennent la fièvre, la toux, les problèmes
respiratoires et la fatigue. Chez la plupart des patients, l'infection se manifeste par des symptômes d'une maladie fébrile légère
avec des infiltrats pulmonaires irréguliers.
Le premier signe clinique de COVID-19 qui a permis de détecter le cas, était la pneumonie. Mais il s'est avéré que l'évolution dela maladie est non spécifique et très variable, allant d'une évolution asymptomatique à une pneumonie grave avec insuffisancepulmonaire et décès. Cependant, selon les connaissances actuelles, environ 80 % des maladies sont légères à modérées.
Bien que des formes graves de la maladie apparaissent également chez des patients plus jeunes et des personnes sansantécédents de maladie, les groupes de personnes suivants présentent un risque accru de formes graves de la maladie : lespersonnes âgées (dont le risque augmente régulièrement à partir de 50 à 60 ans environ), les fumeurs et les personnes souffrantde certaines maladies du système cardiovasculaire ou des poumons, les patients souffrant de maladies chroniques du foie, dediabète sucré, de cancer ou les patients dont le système immunitaire est affaibli (par exemple en raison de déficiences
immunitaires ou de la prise de médicaments qui suppriment le système immunitaire).
Actuellement, il n'existe pas de traitement ou de vaccin spécifique contre l'infection par le SARS-CoV-2.
EspèceSARS-CoV-2(syndrome
respiratoire aigu
sévèrecoronavirus 2)

La maladie

Symptômes (p.ex.)

COVID-19

L'évolution de la maladie est non spécifique,diverse et différents degrés de gravité, elle peut
aller d'une évolution asymptomatique à unepneumonie grave avec insuffisance pulmonaire etdécès.

Modes de transmission
Mode de transmission primaire :infection par gouttelettes ;les infections par frottis et les
infections par la conjonctive des yeux
sont théoriquement possibles

L'identification de l'agent pathogène ou d’une infection par:▪
Test d’acide nucléique:p.ex. PCR-RT▪
Sérologie:
détection des anticorps par p.ex. ELISA

2. INDICATION D’UTILISATION
La trousse SARS-CoV-2 (COVID-19) IgG ELISA est prévue pour la détection qualitative des anticorps IgG contre syndrome
respiratoire aigu sévère coronavirus 2 dans le sérum ou plasma (citrate, héparine) humain pour soutenir le diagnostic de lamaladie COVID-19 et constitue un complément à la détection directe des agents pathogènes. En outre, la sérologie peut êtreutilisée pour recueillir des informations épidémiologiques sur la prévalence du CoV-2-SARS.

3. PRINCIPE DU TEST
La détermination immunoenzymatique qualitative des anticorps spécifiques est basée sur le la technique ELISA (du anglais,
Enzyme-Linked Immunosorbent Assay).
Plaques de Microtitrage sont recouvertes d'antigènes spécifiques pour lier les anticorps correspondants de l'échantillon. Après lelavage des puits pour éliminer l'échantillon détaché, le conjugué peroxydase de raifort (HRP) est ajouté. Ce conjugué se lie aux
anticorps capturés. Dans une deuxième étape de lavage, le conjugué non lié est éliminé. Le complexe immun formé par leconjugué lié est visualisé par l'addition tétraméthylbenzidine (TMB) qui donne un produit de réaction bleu.
L'intensité de ce produit est proportionnelle à la quantité d'anticorps spécifiques dans l'échantillon. L'acide sulfurique est ajouté
pour arrêter la réaction. Cela produit un changement du bleu au jaune. L'absorbance à 450/620 nm est lue en utilisant un
Photomètre de Plaque de Microtitrage ELISA.

14

4. MATERIEL
4.1.

Réactifs fournis

Plaque de Microtitrage: 12 barrettes de 8 puits sécables revêtus d’antigène du SARS-CoV-2; en sachets d'aluminium
refermables.
▪
Tampon de Dilution d’Échantillon IgG: 1 flacon contenant 100 mL de tampon phosphaté (10 mM) pour la dilution del'échantillon; pH 7,2 ± 0,2; prêt à l’emploi; couleur jaune; bouchon blanc; ≤ 0,0015 % (v/v) CMIT/ MIT (3:1).
▪
Solution d’Arrêt: 1 flacon contenant 15 mL d'acide sulfurique, 0,2 mol/L; prêt à l’emploi; bouchon rouge.
▪
Tampon de Lavage (concentré x 20): 1 flacon contenant 50 mL d'un tampon phosphaté (0,2 M) concentré 20 fois
(pH 7,2 ± 0,2) pour laver les puits; bouchon blanc.
▪
Conjugué: 1 flacon contenant 20 mL d'anticorps IgG anti-humaines conjuguées à peroxydase du raifort dans le tampon
phosphaté (10 mM); prêt à l’emploi; couleur bleue, bouchon noir.
▪
Solution de Substrat TMB: 1 flacon contenant 15 mL de 3,3',5,5'-tétraméthylbenzidine (TMB), < 0,1 %; prêt à l’emploi;bouchon jaune.
▪
Contrôle Positif: 1 flacon contenant 2 mL contrôle; prêt à l’emploi; couleur jaune; bouchon rouge; ≤ 0,02% (v/v) MIT.
▪
Contrôle Cut-off: 1 flacon contenant 3 mL contrôle; prêt à l’emploi; couleur jaune; bouchon vert; ≤ 0,02% (v/v) MIT.
▪
Contrôle Négatif: 1 flacon contenant 2 mL contrôle; prêt à l’emploi; couleur jaune; bouchon bleu; ≤ 0,0015% (v/v) CMIT/
MIT (3:1).
Pour les mentions de danger et les conseils de prudence voir chapitre 12.1
Pour les substances potentiellement dangereuses s'il vous plaît vérifiez la fiche de données de sécurité.
▪

4.2.

Matériel fourni▪
▪
▪

1 couvercle autocollante
1 instructions d’utilisation
1 présentation de la plaque4.3.

Matériel et équipement requis

▪
▪
▪
▪
▪
▪
▪

Photomètre de Plaque de Microtitrages ELISA, pour mesurer l'absorbance à 450/620 nm
Incubateur 37 °C
Laveur manuel ou automatique pour le lavage des Plaque de Microtitrage
Pipettes pour utilisation entre 10 et 1000 µL
Mélangeur Vortex
Eau distillée
Tubes jetables

5. STABILITE ET CONSERVATION
Conserver le kit à 2...8 °C. Les réactifs ouverts sont stables jusqu'à la date de péremption indiquée sur l'étiquette lorsqu'il est
conservé à 2...8 °C.

6. PREPARATION DES REACTIFS
Il est très important porter tous les réactifs et échantillons à température ambiante (20...25 °C) et les mélanger avantde commencer le test!

6.1.

Plaque de Microtitrage

Les barrettes sécables sont revêtues d’antigène du SARS-CoV-2. Immédiatement après avoir prélevé les barrettes nécessaires,les barrettes restantes doivent être scellés le vide dans de feuille d’aluminium avec le sac de silicium (le déshydratant) fourni etemmagasiner à 2...8 °C.

6.2.

Tampon de Lavage (conc. x 20)

Diluer le Tampon de Lavage 1+19; par exemple 10 mL du Tampon de Lavage + 190 mL d’eau distillée. Le Tampon de Lavage
est stable pendant 5 jours à la température ambiante ou à 2...8 °C. Cas apparaissent des cristaux dans le concentré, chauffer lasolution à 37 °C par exemple dans un bain-marie mélangez bien avant dilution.

6.3.

Solution de Substrat TMB

La solution est prête à utiliser et doit être emmagasiné à 2...8 °C, à l'abri de la lumière. La solution doit être incolore ou pourrait
avoir une légère couleur bleu clair. Si le substrat devient bleu, il peut avoir été contaminé et ne peut pas être utilisé dans le test.

7. PRELEVEMENT ET PREPARATION DES ECHANTILLONS
Utiliser des échantillons humains de sérum ou plasma (citrate, héparine) pour ce test. Si le test est réalisé dans les 5 jours après
le prélèvement, les échantillons doivent être conservés à 2...8 °C; autrement ils doivent être aliquotés et conservés surgelés(-70…-20 °C). Si les échantillons sont conservés congelés, bien mélanger les échantillons décongelés avant le test. Éviter lescycles répétés de congélation et décongélation. L’inactivation par la chaleur des échantillons n’est pas recommandée.

15

7.1.

Dilution de l’échantillon

Avant du test, tous les échantillons doivent être dilués 1 + 100 avec Tampon de Dilution d’Échantillon IgG. Diluer 10 µLd’échantillon avec 1 mL Tampon de Dilution d’Échantillon IgG dans des tubes pour obtenir une dilution 1 + 100 et mélanger
soigneusement sur un Vortex.

8. PROCEDE DE TEST
Lire attentivement les instructions d’utilisation avant de réaliser le test. La fiabilité des résultats dépend du suivi strict d’utilisationcomme décrit. La technique de test suivante a été validée uniquement pour une procédure manuelle. Si le test doit être effectué
sur un systèmes automatiques pour ELISA, nous conseillons d’augmenter le nombre d’étapes de lavage de trois à cinq et levolume du Tampon de Lavage de 300 à 350 µL. Faites attention au chapitre 12. Avant de commencer le test, le plan de distribution
et d’identification de tous les échantillons et les étalons/contrôles (il est recommandé déterminer en double) doivent êtresoigneusement établi sur la feuille présentation de la plaque prévue dans le conseil de kit. Sélectionner le nombre de barrettes
ou de puits nécessaires et les placer sur le support.
Réaliser toutes les étapes du test dans l'ordre donné et sans délai.
Un embout de pipette propre et jetable doit être utilisé pour distribuer chaque étalon/contrôle et échantillon.
Régler l'incubateur à 37 ± 1 °C.
Pipeter 100 µL de étalons/contrôles et d’Échantillons dilués dans leurs puits respectifs. Garder le puits A1 pour le blancsubstrat.
2. Couvrir les puits avec le couvercle, fourni dans le kit.
3. Incuber pendant 1 heure ± 5 minutes à 37 ± 1 °C.
4. A la fin de l'incubation, enlever le couvercle, aspirer le contenu des puits et laver chaque puits trois fois avec 300 µL du
Tampon de Lavage. Éviter les débordements des puits de réaction. L'intervalle entre le cycle de lavage et l'aspiration
doit être > 5 sec. À la fin, enlever soigneusement le liquide restant en tapotant les barrettes sur du papier absorbant
avant la prochaine étape!
Note:
L‘étape de lavage est très importante! Un lavage insuffisant peut conduire à une précision faible et de fauxrésultats.
5. Pipeter 100 µL du Conjugué dans tous les puits sauf le puits Blanc A1.
6. Incuber pendant 30 minutes à température ambiante (20…25 °C). N’exposer pas à la lumière directe du soleil.
7. Répéter l'étape numéro 4.
8. Pipeter 100 µL de la Solution de Substrat TMB dans tous les puits.
9. Incuber pendant exactement 15 minutes à température ambiante (20…25 °C) dans l'obscurité. Une couleur bleue
se produit en raison d’une réaction enzymatique.
10. Pipeter 100 µL de la Solution d’Arrêt dans tous les puits dans le même ordre et à la même vitesse que pour la Solution
de Substrat TMB, ainsi, il y a un changement du bleu au jaune.
11. Mesurer l'absorbance à 450/620 nm dans les 30 minutes après l'addition de la Solution d’Arrêt.
1.

8.1.

MesureRéglez le photomètre de Plaque de Microtitrage ELISA à zéro en utilisant le Blanc substrat.
Si - pour des raisons techniques - le photomètre de Plaque de Microtitrage ELISA ne peut pas être ajusté à zéro en utilisant leBlanc substrat, la valeur d’absorbance de cette doit être soustraire la valeur d’absorbance de toutes les autres valeursd’absorbance mesurées afin d’obtenir des résultats fiables!
Mesurer l'absorbance de tous les puits à 450 nm et enregistrer les valeurs d’absorbance pour chaque étalon/contrôle etéchantillon dans la présentation de la plaque.
Il est recommandé d’effectuer la mesure dichromatique utilisant 620 nm comme longueur d’onde de référence.
Si doubles déterminations ont été effectuées, calculer les valeurs moyennes d’absorbance.

9. RESULTATS
9.1.

Critères de validation

Afin de valider le test, les critères suivants doivent être respectés:▪
Blanc Substrat:
Valeur d’absorbance< 0,100▪
Contrôle Négatif:
Valeur d’absorbance< 0,200 et < Cut-off▪
Contrôle Cut-off:Valeur d’absorbance
0,150 – 1,300▪
Contrôle Positif:
Valeur d’absorbance> Contrôle Cut-off
Lorsque ces critères ne sont pas remplis, le test n’est pas valide et doit être recommencé.

9.2.

Calcul des résultats

La valeur seuil correspond à la moyenne des valeurs d’absorbance du Contrôle cut-off.
Exemple:0,44 DO Contrôle Cut-off + 0,42 DO Contrôle Cut-off = 0,86 : 2 = 0,43
Cut-off = 0,43

16

9.2.1.

Résultats en unités [NTU]

Valeur (moyenne) d’absorbance de l'échantillon x 10 = [unités NovaTec = NTU]
Cut-off
Exemple:9.3.

1,591 x 10 = 37 NTU
0,43Interprétation des résultats

Cut-off

10 NTU-

Positif> 11 NTU

Les anticorps dirigés contre l'agent pathogène sont présents. Il ya eu uncontact avec l'antigène (pathogène resp. vaccin).

Zone grise

9 – 11 NTU

Les anticorps dirigés contre l'agent pathogène ne pouvaient pas être détectésclairement. Il est recommandé de répéter le test avec un échantillon frais dans2 à 4 semaines. Si le résultat est encore dans la zone grise l'échantillon est
jugé négatif.

Negatif< 9 NTU

L'échantillon ne contient pas d’anticorps contre l'agent pathogène. Un contact
préalable avec l'antigène (pathogène resp. vaccin) est peu probable.

Le diagnostic d’une maladie infectieuse ne devrait pas être établi sur la base du résultat d’une seule analyse. Un diagnostic
précis devrait prendre en considération l'histoire clinique, la symptomatologie ainsi que les données sérologiques. Les
données sérologiques sont de valeur limitée dans le cas des patients immunodéprimés et des nouveaux-nés.

9.3.1.

Isotypes d’anticorps et l’Etat de l'infection

Sérologie
IgM

Signification
Caractéristique de la réponse primaire de l’anticorps
Titre élevé d’IgM : → suggère une infection très récente ou aigüe
Suit la production d’IgM
Caractéristique de la réponse secondaire de l’anticorps
Peut persister pendant plusieurs années
Des titres élevés d’IgG à faible titre d’IgM: → peuvent indiquer une infection ancienne
Ils sont produits au niveau des muqueuses dans tout le corps (⇒ barrière de protection)
Habituellement ils sont produits en début d'infection

IgG

IgA

10. PERFORMANCES DU TEST
Ces résultats s’appuient sur les groupes d’Échantillons étudiés; il n’agit pas de caractéristiques techniques garanties.
Pour plus d’informations sur les performances du test s'il vous plaît contactez NovaTec Immundiagnostica GmbH.

10.1. Précision
Intra-essai
#1
#2
#3

n
24
24
24

moyenne (E)
0,815
0,782
0,362

CV (%)
4,06
4,28
8,71

Inter-essai
#1
#2
#3

n
12
12
12

moyenne (NTU)
16,43
12,76
7,05

CV (%)
7,37
4,11
8,65

10.2. Spécificité diagnostique
La spécificité diagnostique est définie comme la probabilité d’obtenir un résultat négatif en l'absence d’un analyte spécifique. Les
infections par le SARS-CoV-2 sont apparues en décembre 2019 à Wuhan, en Chine. Les valeurs de prévalence attendues pourles donneurs de sang allemands et américains avant décembre 2019 s'élèvent donc à 0 %.
Les résultats positifs déterminés correspondent à une spécificité de 99,24 % (Intervalle de confiance à 95 %:
95,82 % - 99,98 %).
Échantillon collectif
Donneurs de sang Allemagne
Donneurs de sang USA
Total

Nombred’échantillons (n)
83
50
133

Positif
0
1
1

17

Zone
grise
1
0
1

Negatif
82
49
131

Spécificité
95 % IC(Z.g. exclus)
100 %98,00 %
99,24 %
95,82 % - 99,98 %10.3. Sensibilité diagnostique
La sensibilité diagnostique est définie comme la probabilité d’obtenir un résultat positif en présence d’un analyte spécifique.
42 échantillons de 25 patients testés positifs pour l'ARN du SARS-CoV-2 par PCR-RT ont été analysés.
Jours après l'apparition
des symptômes
0-5
6-8
9-11
≥ 12

Nombred’échantillons (n)
13
10
10
9

Positif

Zone grise

Negatif

1
4
4
9

0
0
0
0

12
6
6
0

Sensibilité(Z.g. exclus)
7.69 %
40,00 %
40,00 %
100 %10.4. Interférences
Trois échantillons cliniques présentant des réactivités différentes ont été testés pour détecter toute interférence avec chacune
des substances énumérées dans le tableau ci-dessous: un échantillon positif, un échantillon négatif et un échantillon équivoque.
Tous les échantillons ont présenté une variation du signal inférieure à 15 % lors des tests avec chaque interférant potentiel.
Substance interférente
Albumin
Bilirubine conjuguée
Bilirubine non conjuguée
Cholestérol
Hémoglobine
Triglycérides

Concentration testée
60 mg/mL
0,4 mg/mL
0,4 mg/mL
4 mg/mL
10 mg/mL
15 mg/mL

10.5. Réaction croisée
131 échantillons avec des activités d'anticorps pour potentiellement croiser des paramètres de réaction (y compris des anticorps
contre plusieurs pathogènes respiratoires) ont été testés pour évaluer la réactivité croisée de l'essai.
Les échantillons positifs pour les
anticorps contre
Adénovirus
Parainfluenzavirus
Candida albicans
Bordetella pertussis
Influenzavirus A
Influenzavirus B
Enterovirus
Virus respiratoire syncytial
Chlamydia pneumoniae
Legionella pneumophila
Mycoplasma pneumoniae
Haemophilus influenzae
Coronavirus, autre que SARS-CoV-2
Facteur rhumatoïde positif

Nombre d’échantillons
(n)
10
9
8
9
9
10
10
10
9
8
9
3
1
26

Positif

Zone grise

Negatif

0
0
0
0
0
0
0
1
0
0
0
0
0
0

0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0

10
9
8
9
9
10
10
9
9
8
9
3
1
26

Des réactions croisées avec des anticorps à virus respiratoire syncytial ne peuvent être exclues. Une réactivité croisée avec
d'autres coronavirus humains doit être envisagée pour l'interprétation des résultats.

11. LIMITES DE LA TECHNIQUE
Une contamination bactérienne ou des cycles de congélation/décongélation répétés de l`échantillon peuvent affecter les valeursd’absorption.

12. PRECAUTIONS ET AVERTISSEMENTS
▪

▪
▪
▪
▪
▪

En accord avec l’article 1 paragraphe 2b de la directive européenne 98/79/EC, l’utilisation des dispositifs médicaux dediagnostic in vitro est destinée par le fabricant à garantir le bien-fondé, les performances et la sécurité du produit. Par
conséquent, la procédure de test, l’information, les précautions et mises en garde de la notice d’emploi, doivent être suivies
de façon stricte. L’utilisation de ces trousses avec des automates ou dispositifs similaires doit être validée. Aucun
changement de la conception, composition et procédure de test, ainsi que l’utilisation avec d’autres produits non approuvés
par le fabricant, ne sont pas autorisés; seul l’utilisateur est responsable de tels changements. Le fabricant n’est pas
responsable des faux résultats et des incidents dus à ces motifs. Le fabricant n’est pas responsable des résultats fournis par
analyse visuelle des échantillons des patients.
Uniquement pour diagnostic in vitro.
Tous les matériaux d’origine humaine ou animale doivent être considérés et traités comme étant potentiellement infectieux.
Tous les composants d’origine humaine utilisés pour la fabrication de ces réactifs ont été analysés et ont été trouvés nonréactifs en Ag HBs, en anticorps anti-VHI 1 et 2 et en anticorps anti-VHC.
Ne pas échanger les réactifs ou les Plaque de Microtitrage provenant de différents lots de production.
Ne pas utiliser de réactifs provenant d’autres fabricants avec les réactifs de cette trousse.
18

▪
▪
▪
▪
▪
▪
▪

Ne pas utiliser les réactifs après la date de péremption indiquée sur l'étiquette.
Utiliser seulement des embouts de pipette, des distributeurs et du matériel de laboratoire propres.
Ne pas échanger les bouchons des flacons, pour éviter la contamination croisée.
Fermer soigneusement les flacons après utilisation pour éviter l'évaporation et la contamination microbienne.
Avant une nouvelle utilisation, vérifier les flacons de conjugué et de étalon/contrôle, déjà utilisés, pour exclure unecontamination microbienne.
Pour éviter la contamination croisée et des résultats faussement élevés, introduire les échantillons de patients et les réactifs
exactement au fond des puits sans éclabousser.
Le ELISA est uniquement destinée à l’utilisation par un personnel compétent, maîtrisant parfaitement les techniques detravail.

12.1. Note de sécurité pour les réactifs contenant des substances dangereuses
Les réactifs peuvent contenir du CMIT/MIT (3:1) ou du MIT (voir chapitre 4.1)
Par conséquent, les mentions de danger et les conseils de prudence suivants s’appliquent.
Attenttion

H317
P261
P280
P302+P352
P333+P313
P362+P364

Peut provoquer une allergie cutanée
Éviter de respirer les aérosols
Porter des gants de protection/ des vêtements de protection.
EN CAS DE CONTACT AVEC LA PEAU: Laver abondamment savon àl’eau
En cas d’irritation ou d’éruption cutanée: consulter un médecin.
Enlever les vêtements contaminés et les laver avant réutilisation.

De plus amples informations peuvent être trouvées dans la fiche de données de sécurité.

12.2. Elimination des déchets
Les résidus des produits chimiques et des préparations sont considérés en général comme des déchets dangereux. L’éliminationde ce type de déchet est réglementée par des lois et réglementations nationales et régionales. Contacter les autorités
compétentes ou les sociétés de gestion des déchets pour obtenir des renseignements sur l’élimination des déchets dangereux.

13. INFORMATION POUR LES COMMANDES
Référence:

COVG0940

SARS-CoV-2 (COVID-19) IgG (96 déterminations)

19

ITALIANO
1. INTRODUZIONE
Alla fine del 2019, una nuova malattia respiratoria è emersa nella città di Wuhan, nella provincia di Hubei della Repubblica
Popolare Cinese, e si è presto diffusa rapidamente nel Paese e in tutto il mondo. L'agente causale è stato identificato comecoronavirus 2 della sindrome respiratoria acuta grave (SARS-CoV-2). La SARS-CoV-2 (2019-nCoV), come il coronavirus della
SARS strettamente correlato (SARS-CoV), appartiene al genere Betacoronavirus della famiglia dei coronavirus. Il serbatoio
zoonotico del virus sembrano essere pipistrelli.
I coronavirus sono virus di RNA grande, di singolo filamento a polarità positiva che infettano l'uomo, ma anche una vasta gamma
di animali. I comuni coronavirus umani NL63, 229E, OC43 e HKU1 sono diffusi soprattutto nei mesi invernali. Sono responsabilifino a un terzo di tutte le malattie respiratorie acute, tipicamente con sintomi lievi (comune raffreddore). Più dell’ottanta per cento,
80%, della popolazione adulta ha anticorpi contro i coronavirus umani. L'immunità da precedenti infezioni dura solo per un breve
periodo. Pertanto, le reinfezioni con lo stesso agente patogeno sono possibile solo dopo un anno.
La SARS-CoV-2 è trasmessa prevalentemente tramite infezione da goccioline attraverso tosse o starnuti e attraverso il contatto
ravvicinato con i pazienti infetti. In teoria, sono possibili anche infezioni da striscio e infezioni attraverso la congiuntiva degli occhi.
Il periodo d’incubazione è nella media 5-6 giorni (e fino a un massimo di 14 giorni).
Le manifestazioni cliniche della malattia COVID-19 correlata alla SARS-CoV-2 includono febbre, tosse, problemi respiratori eaffaticamento. Nella maggior parte dei pazienti l'infezione si manifesta con sintomi di una lieve malattia febbrile con infiltrazioni
polmonari irregolari.
Il segno clinico iniziale di COVID-19 che ha consentito il rilevamento del caso è stato la polmonite. Ma si è scoperto che il decorsodella malattia non è specifico e varia ampiamente, dai decorsi asintomatici alla polmonite grave con insufficienza polmonare e
morte. Tuttavia, sulla base delle conoscenze attuali, circa l'ottanta per cento, 80 %, delle malattie sono da lievi a moderate.
Sebbene i decorsi gravi della malattia avvengano anche in pazienti più giovani e in persone senza una precedente malattia, iseguenti gruppi di persone hanno un rischio maggiore di forme gravi della malattia: anziani (con un rischio in costante aumento
da circa 50-60 anni di età), fumatori e persone con determinate malattie del sistema cardiovascolare o dei polmoni, pazienti con
malattie croniche del fegato, diabete mellito, cancro, o pazienti con un sistema immunitario indebolito (ad esempio a causa dicarenze immunitarie o con l'assunzione di farmaci che sopprimono il sistema immunitario).
Attualmente non sono disponibili trattamenti specifici o vaccini contro l'infezione da SARS-CoV-2.
SpecieMalattia

SARS-CoV-2(sindrome respiratoria
COVID-19
acuta grave delcoronavirus 2)

Sintomi (p.es.)
Il decorso della malattia è aspecifico, vario e
con diversi gradi di gravità, da decorsi
asintomatici a polmonite grave con
insufficienza polmonare e morte

Via di trasmissione
Modalità primaria di trasmissione:
infezione da goccioline;
infezioni da striscio e infezioni
attraverso la congiuntiva degli occhi
sono teoricamente possibili

La presenza di agenti patogeni o infezione può essere identificata mediante:▪
Test di acido nucleico:p.es. RT-PCR▪
Sierologia:
rilevazione di anticorpi tramite p.es. ELISA

2. USO PREVISTO
Il SARS-CoV-2 (COVID-19) IgG ELISA è un kit per la determinazione qualitativa degli anticorpi specifici della classe IgG persindrome respiratoria acuta grave del coronavirus 2 nel siero o plasma (citrato, eparina) umano per sostenere la diagnosi dellamalattia COVID-19 e costituisce un supplemento alla rilevazione diretta del patogeno. Inoltre, la sierologia può essere utilizzata
per raccogliere informazioni epidemiologiche sulla prevalenza della SARS-CoV-2.

3. PRINCIPIO DEL TESTLa determinazione immunoenzimatico qualitativa degli anticorpi specifici si basa sulla tecnica ELISA (d’inglese Enzyme-linked
immunosorbent assay).
Piastre di Microtitolazione sono rivestite con antigeni specifici che si legano agli anticorpi presenti nel campione. Dopo aver lavato
i pozzetti per rimuovere tutto il materiale campione non legato, il coniugato di perossidasi di rafano (HRP) è aggiunto. Questo
coniugato si lega agli anticorpi catturati. In una seconda fase di lavaggio coniugato, non legato è rimosso. Il complesso immunitario
formato dal coniugato legato sarà evidenziato aggiungendo tetrametilbenzidina (TMB) substrato che dà una colorazione blu.
L'intensità di questa colorazione è direttamente proporzionale alla quantità di anticorpi specifici presenti nel campione. Acido
solforico è aggiunto per bloccare la reazione. Questo produce un cambiamento di colore dal blu al giallo. Assorbanza a
450/620 nm viene letto utilizzando un fotometro per Piastre di Microtitolazione ELISA.

20

4. MATERIALI
4.1.

Reagenti forniti▪

Piastre di Microtitolazione: 12 strisce divisibili in 8 pozzetti, con adesi antigeni del SARS-CoV-2; dentro una bustad’alluminio richiudibile.
▪
Tampone di Diluizione del Campione IgG: 1 flacone contenente 100 mL di tampone fosfato (10 mM) per diluire i
campioni; pH 7,2 ± 0,2; colore giallo; pronto all’uso; tappo bianco; ≤ 0,0015% (v/v) CMIT/ MIT (3:1).
▪
Soluzione Bloccante: 1 flacone contenente 15 mL di acido solforico, 0,2 mol/L, pronto all’uso; tappo rosso.
▪
Tampone di Lavaggio (20x conc.): 1 flacone contenente 50 mL di un tampone fosfato concentrato 20 volte (0,2 M) per
il lavaggio dei pozzetti; pH 7,2 ± 0,2; tappo bianco.
▪
Coniugato: 1 flacone contenente 20 mL di anticorpi IgG anti-umani, coniugati a perossidasi in tampone fosfato (10 mM);
colore azzurro; pronto all’uso; tappo nero.
▪
Soluzione Substrato TMB: 1 flacone contenente 15 mL di 3,3`,5,5`-Tetrametilbenzidina (TMB), < 0,1 %; pronto all’uso;
tappo giallo.
▪
Controllo Positivo: 1 flacone da 2 mL controllo; colore giallo; tappo rosso; pronto all’uso; ≤ 0,02% (v/v) MIT.
▪
Controllo Cut-off: 1 flacone da 3 mL controllo; colore giallo; tappo verde; pronto all’uso; ≤ 0,02% (v/v) MIT.
▪
Controllo Negativo: 1 flacone da 2 mL controllo; colore giallo; tappo blu; pronto all’uso; ≤ 0,0015% (v/v) CMIT/ MIT (3:1).
Le indicazioni di pericolo e consigli di prudenza vedi capitolo 12.1.
Per le sostanze potenziali pericolose si prega di leggere la scheda di dati di sicurezza.

4.2.

Accessori forniti▪
▪
▪

1 pellicola adesiva
1 istruzione per l’uso
1 schema della piastra

4.3.

Materiali e attrezzature necessari

▪
▪
▪
▪
▪
▪
▪

Fotometro per Piastre di Microtitolazione con filtri da 450/620 nm
Incubatrice 37 °C
Lavatore, manuale o automatico, di Piastre di Microtitolazione
Micropipette per l’uso tra 10-1000 µL
Vortex-Mixer
Acqua distillata
Provette monouso

5. MODALITÀ DI CONSERVAZIONE
Conservare il kit a 2...8 °C. I reagenti aperti sono stabili fino alla data di scadenza indicata sull'etichetta quando sono conservati
a 2...8 °C.

6. PREPARAZIONE DEI REAGENTIÈ molto importante, portare tutti i reagenti e campioni a temperatura ambiente (20…25 °C) e mescolare prima diiniziare il test.

6.1.

Piastre di Microtitolazione

Le strisce divisibili sono rivestiti antigeni del SARS-CoV-2. Immediatamente dopo la rimozione degli strisce necessarie, le strisce
rimanenti devono essere sigillare nuovamente in un foglio di alluminio insieme con il sacchetto di gel di silice conservati a 2...8 °C.

6.2.

Tampone di Lavaggio (20x conc.)

Diluire il tampone di Lavaggio 1+19; per esempio: 10 mL del Tampone di Lavaggio + 190 mL di acqua distillata. Il campione ditampone diluito è stabile per 5 giorni a temperatura ambiente o a 2...8 °C. Se cristalli appaiono nel concentrato, riscaldare lasoluzione a 37 °C per esempio in un bagnomaria. Mescolare bene prima della diluizione.

6.3.

Soluzione Substrato TMB

La soluzione sta pronta all'uso e deve essere conservata a 2...8 °C, al riparo dalla luce. La soluzione deve essere incolore opotrebbe avere un leggero colore blu chiaro. Se il substrato diventa blu, potrebbe essere stato contaminato e non può essere
utilizzato nel test.

7. PRELIEVO E PREPARAZIONE DEI CAMPIONIPer questo test si prega di usare campioni di siero o plasma (citrato, eparina) umano. Se il test è fatto entro 5 giorni dal prelievo i
campioni possono essere conservati tra 2...8 °C. Altrimenti devono essere aliquotati e congelati tra (-70…-20 °C). Se i campionisono conservati congelati, mescolare bene i campioni scongelati prima del test. Evitare cicli ripetuti dicongelamento/scongelamento. L’inattivazione dei campioni per mezzo del calore non è raccomandata.

7.1.

Diluizione dei campioni

Prima del test, diluire i campioni 1+100 con Tampone di Diluizione del Campione IgG. Per esempio, pipettare nelle provette 10 µL
di campione + 1 mL di Tampone di Diluizione del Campione IgG e mescolare bene (Vortex).

21

8. PROCEDIMENTO
Leggere bene le istruzioni per l’uso prima di iniziare il teste. L’affidabilità dei risultati dipende dalla stretta aderenza le istruzioni
per l’uso di prova come descritto. La seguente procedura è stata validata per l’esecuzione manuale. Per un’esecuzione su
strumentazione automatica si consiglia di incrementare il numero di lavaggi fino 3 a 5 volte e il volume del Tampone di Lavaggio
da 300 a 350 µL per evitare effetti di lavaggio. Prestare attenzione al capitolo 12. Stabilire innanzitutto il piano di distribuzione e
identificazione dei campioni e standards/controlli (è raccomandato determinare in duplicato) sullo schema della piastra fornito con
il kit. Inserire i pozzetti necessari nel supporto.
Eseguire il test nell’ordine stabilito dalle istruzioni, senza ritardi.
Sul pipettaggio utilizzare puntali nuovi e puliti per ogni campione e standard/controllo.
Regolare l’incubatore a 37 ± 1 °C.
1. Pipettare 100 µL di standard/controllo e di campione diluito nei relativi pozzetti. Usare il pozzetto A1 per il Biancosubstrato.
2. Coprire i pozzetti con la pellicola adesiva, fornita nel kit.
3. Incubare 1 ora ± 5 min a 37 ± 1°C.
4. Al termine dell’incubazione, togliere la pellicola e aspirare il liquido dai pozzetti. Successivamente lavare i pozzetti tre
volte con 300 µL di Tampone di Lavaggio. Evitare che la soluzione trabocchi dai pozzetti. L’intervallo tra il lavaggio el’aspirazione deve essere > 5 sec. Dopo il lavaggio picchiettare delicatamente i pozzetti su una carta assorbente per
togliere completamente il liquido, prima del passo successivo!
Attenzione:
Il lavaggio è una fase molto importante. Da lavaggio insufficiente risulta una bassa precisione e
risultati falsi.
5. Pipettare 100 µL di Coniugato in tutti i pozzetti, escludendo quello con il Bianco-substrato (Blank) A1.
6. Incubare per 30 min a temperatura ambiente (20...25 °C). Non esporre a fonti di luce diretta.
7. Ripetere il lavaggio secondo punto 4.
8. Pipettare 100 µL di Soluzione Substrato TMB in tutti i pozzetti.
9. Incubare precisamente per 15 min a temperatura ambiente (20...25 °C) al buio. Un colore blu verifica a causadella reazione enzimatica.
10. Pipettare 100 µL di Soluzione Bloccante in tutti i pozzetti, nello stesso ordine della Soluzione Substrato TMB, in tal modo
un cambiamento di colore dal blu al giallo si verifica.
11. Misurare l’assorbanza a 450/620 nm entro 30 min dopo l’aggiunta della Soluzione Bloccante.

8.1.

Misurazione

Regolare il fotometro per le piastre di Microtitolazione ELISA a zero usando il substrato-Bianco (Blank).
Se, per motivi tecnici, non è possibile regolare il fotometro per le piastre di Microtitolazione a zero usando il Bianco-substrato, ilvalore de assorbanza de questo deve essere sottratto dai valori di l’assorbanza da tutti i valori delle altre assorbanze.
Misurare l’assorbanza di tutti i pozzetti a 450 nm e inserire tutti i valori misurati nello schema della piastra.
È raccomandato fare le misurazioni delle onde bichrome (due colori). Utilizzando la lunghezza d’onda de 620 nm come misura diriferimento.
Dove sono state misurate in doppio, calcolare la media delle assorbanze.

9. RISULTATI
9.1.

Validazione del test

Il test è valido se risponde ai prossimi criteri:▪
Substrato Bianco (Blank): Valore di assorbanza< 0,100▪
Controllo Negativo:
Valore di assorbanza< 0,200 e < Cut-off▪
Controllo Cut-off:Valore di assorbanza
0,150 – 1,300▪
Controllo Positivo:
Valore di assorbanza> Cut-off
Se non sono soddisfatti questi criteri, il test non è valido e deve essere ripetuto.

9.2.

Calcolo dei risultati

Il Cut-off è la media dei valori di assorbanza dei Controlli Cut-off.
Esempio: Valore di assorbanza del Controllo Cut-off 0,44 + valore di assorbanza del Controllo Cut-off 0,42 = 0,86/2 = 0,43
Cut-off = 0,43

22

9.2.1.

Risultati in unità [NTU]

Assorbanza media del campione x 10
Cut-off
Esempio:

9.3.

=[unità NovaTec = NTU]

1,591 x 10 = 37 NTU
0,43Interpretazione dei risultati

Cut-off

10 NTU-

Positivo> 11 NTU

Anticorpi contro il patogeno sono presenti. C'è stato un contatto con l'antigene(patogeno resp. vaccino).

Zonaq grigia

9 – 11 NTU

Anticorpi contro il patogeno non è stato possibile rilevare chiaramente.
Si consiglia di ripetere il test con un nuovo campione in 2-4 settimane.
Se il risultato è nuovamente nella zona grigia il campione viene giudicato comenegativo.

Negativo< 9 NTU

Il campione non contiene anticorpi contro il patogeno. Un precedente contatto
con l'antigene (patogeno resp. vaccino) è improbabile.

La diagnosi di una malattia infettiva non deve essere fatta soltanto sulla risultanza di un unico test.
È importante considerare anche l’anamnesi ed i sintomi del paziente.
I risultati del test da pazienti immunosoppressi e neonati hanno un valore limitato.

9.3.1.

Isotipi degli anticorpi e Stato dell’infezione

Sierologia
IgM
IgG

IgA

Significato
Caratteristica della risposta dell'anticorpo primario
Titolo IgM elevato: → suggerisce un'infezione attuale o molto recente.
Segue la produzione di IgMCaratteristica della risposta dell'anticorpo secondarioPuò persistere per diversi anni
Titolo IgG elevato con titolo IgM basso: → può indicare un'infezione passata.
Sono prodotte a livello delle mucose in tutto il corpo (⇒ barriera protettiva)
Solitamente sono prodotte all’inizio dell’infezione

10. CARATTERISTICHE DEL TEST
I risultati si riferiscono al gruppo di campioni investigato; questi non sono specifiche garantite.
Per ulteriori informazioni su caratteristiche del test, si prega, di contattare NovaTec Immundiagnostica GmbH.

10.1. Precisione
Intradosaggio
#1
#2
#3

n
24
24
24

Media (E)
0,815
0,782
0,362

CV (%)
4,06
4,28
8,71

Interdosaggio
#1
#2
#3

n
12
12
12

Media (NTU)
16,43
12,76
7,05

CV (%)
7,37
4,11
8,65

10.2. Specificità diagnostica
La specificità diagnostica è la probabilità del test di fornire un risultato negativo in assenza di analita specifici. Le infezioni da
SARS-CoV-2 sono emerse nel dicembre 2019 a Wuhan, China. I valori di prevalenza previsti per i donatori di sangue tedeschi estatunitensi da prima del dicembre 2019 sono quindi pari allo 0 %.
I risultati positivi determinati corrispondono a una specificità del 99,24 % (95% Intervallo di confidenza: 95,82 % - 99,98 %).
Collettivo campione
Donatore di sangue
Germania
Donatore di sangue USA
TotaleNumero dicampioni (n)
83
50
133

Positivo

Zona grigia

Negativo

01

82

Specificità(Z.g. esclusi)
100 %

1
1

0
1

49
131

98,00 %
99,24 %

23

95 % IC

95,82 % - 99,98 %10.3. Sensibilità diagnostica
La sensibilità diagnostica è la probabilità del test di fornire un risultato positivo alla presenza di analita specifici. Sono stati
analizzati 42 campioni di 25 pazienti risultati positivi al SARS-CoV-2 RNA mediante RT-PCR.
Giorni dopo
l'insorgenza dei sintomi
0-5
6-8
9-11
≥ 12

Numero dicampioni (n)
13
10
10
9

Positivo

Zona grigia

Negativo

1
4
4
9

0
0
0
0

12
6
6
0

Sensibilità(Z.g. esclusi)
7.69 %
40,00 %
40,00 %
100 %10.4. Possibili interferenze
Sono stati testati tre campioni clinici che presentavano reattività diverse per verificare la presenza di interferenze con ciascunadelle sostanze elencate nella tabella seguente: un campione positivo, uno negativo e uno equivoco. Tutti i campioni hanno
mostrato un cambiamento di segnale inferiore al 15 % quando sono stati testati con ogni potenziale interferente.
Sostanza interferente

Concentrazione testata

Albumina
Bilirubina coniugata
Bilirubina non coniugata
Colesterolo
Emoglobina
Trigliceridi

60 mg/mL
0,4 mg/mL
0,4 mg/mL
4 mg/mL
10 mg/mL
15 mg/mL

10.5. Reattività crociata
Sono stati testati 131 campioni con attività anticorpale per parametri a reazione incrociata potenzialmente (compresi gli anticorpi
contro diversi agenti patogeni respiratori) per valutare la reattività incrociata del saggio.
Campioni positivi agli anticorpi per
Adenovirus
Parainfluenzavirus
Candida albicans
Bordetella pertussis
Influenzavirus A
Influenzavirus B
Enterovirus
Virus sinciziale respiratorio
Chlamydia pneumoniae
Legionella pneumophila
Mycoplasma pneumoniae
Haemophilus influenzae
Coronavirus, diverso da SARS-CoV-2
Fattore reumatoide positivo

Numero di campioni (n)
10
9
8
9
9
10
10
10
9
8
9
3
1
26

Positivo
0
0
0
0
0
0
0
1
0
0
0
0
0
0

Zona grigia
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0

Negativo
10
9
8
9
9
10
10
9
9
8
9
3
1
26

Non si possono escludere reazioni incrociate con anticorpi contro anticorpi contro il virus respiratorio sinciziale. La reattività
crociata con altri coronavirus umani deve essere presa in considerazione per l'interpretazione dei risultati.

11. LIMITAZIONIUna contaminazione da microorganismi o ripetuti cicli di congelamento-scongelamento possono alterare i valori delle assorbanze.

12. PRECAUZIONI E AVVERTENZA
▪

▪
▪
▪
▪
▪
▪
▪

In ottemperanza all’articolo 1, paragrafo 2 della direttiva Europea 98/79/EC, l’uso dei diagnostici medici in vitro è inteso daparte del produttore ad assicurare la congruenza, le prestazioni e la sicurezza del prodotto. Di conseguenza la procedura
analitica, le informazioni, le precauzioni e le avvertenze contenute nelle istruzioni per l’uso devono essere seguite
scrupolosamente. L’uso dei kit con analizzatori e attrezzature similari deve essere previamente convalidato. Qualunquecambiamento nello scopo, nel progetto, nella composizione o struttura e nella procedura analitica, così come qualunque uso
dei kit in associazione ad altri prodotti non approvati dal produttore non è autorizzato; l’utilizzatore stesso è responsabile diquesti eventuali cambiamenti. Il produttore non è responsabile per falsi risultati e incidenti che possano essere causati daqueste ragioni. Il produttore non è responsabile per qualunque risultato ottenuto attraverso esame visivo dei campioni dei
pazienti.
Solo per uso diagnostico in-vitro.
Tutti i materiali di origine umana o animale devono essere considerati potenzialmente contagiosi e infettivi.
Tutti gli elementi di origine umana sono stati trovati non reattivi con Anti-HIV-Ab, Anti-HCV-Ab e HBsAg.
Non scambiare reagenti e Piastre di Microtitolazione di lotti diversi.
Non utilizzare reagenti d’altri produttori insieme con i reagenti di questo kit.
Non usare dopo la data di scadenza.
Utilizzare soltanto punte per pipette, distributori, e articoli da laboratorio puliti.
24

▪
▪
▪
▪
▪

Non scambiare i tappi dei flaconi, per evitare contaminazione crociata.
Richiudere i flaconi immediatamente dopo l’uso per evitare la vaporizzazione e contaminazione.
Una volta aperti e dopo relativo stoccaggio verificare i reagenti per una loro eventuale contaminazione prima dell’uso.
Per evitare contaminazioni crociate e risultati erroneamente alti pipettare i campioni e reagenti con molta precisione nei
pozzetti senza spruzzi.
Il ELISA è previsto soltanto per essere impiegato da parte di personale specializzato che conosce perfettamente le tecniche
di lavoro.

12.1. Nota di sicurezza per i reagenti contenenti sostanze pericolose
I reagenti possono contenere CMIT/MIT (3:1) o MIT (vedi capitolo 4.1)
Pertanto, si applicano le seguenti indicazioni di pericolo e le consigli di prudenza.
Attenzione

H317
P261
P280
P302+P352

Può provocare una reazione allergica cutanea.
Evitare di respirare gli aerosol.
Indossare guanti/ indumenti protettivi.
IN CASO DI CONTATTO CON LA PELLE: lavare abbondantemente consapone acqua.
P333+P313
In caso di irritazione o eruzione della pelle: consultare un medico.
P362+P364
Togliere tutti gli indumenti contaminati e lavarli prima di indossarli
nuovamente.
Ulteriori informazioni sono disponibili nella scheda di dati di sicurezza.

12.2. Smaltimento
In genere tutte le sostanze chimiche sono considerati rifiuti pericolosi. Lo smaltimento è regolato da leggi nazionali. Per ulteriori
informazioni contattare l’autorità locale.

13. INFORMAZIONI PER GLI ORDINI
Numero del prodotto:

COVG0940

SARS-CoV-2 (COVID-19) IgG (96 determinazioni)

25

ESPAÑOL
1. INTRODUCCIÓN
A finales de 2019 surgió una nueva enfermedad respiratoria en la ciudad de Wuhan, en la provincia de Hubei de la República
Popular China, que pronto se propagó rápidamente dentro del país y en todo el mundo. El agente causal se identificó como elcoronavirus 2 del síndrome respiratorio agudo severo (SARS-CoV-2). El SARS-CoV-2 (2019-nCoV), al igual que el coronavirusdel SARS estrechamente relacionado (SARS-CoV), pertenece al género Betacoronavirus de la familia de los coronavirus. El
reservorio zoonótico del virus parece ser los murciélagos.
Los coronavirus son virus de ARN grandes, monocatenarios, de sentido positivo que infectan a los seres humanos, pero también
a una amplia gama de animales. Los coronavirus humanos comunes NL63, 229E, OC43 y HKU1 se propagan comúnmente,especialmente durante los meses de invierno. Son responsables de hasta un tercio de todas las enfermedades respiratorias
agudas, típicamente con síntomas leves (resfriado común). Más del 80 % de la población adulta tiene anticuerpos contra loscoronavirus humanos. La inmunidad de las infecciones anteriores dura sólo un corto período. Por lo tanto, las reinfecciones con
el mismo patógeno son posibles justo después de un año.
El SARS-CoV-2 se transmite predominantemente por infección dor gotitas a través de la tos o los estornudos y por el contacto
cercano con pacientes infectados. En teoría, la infección por frotis y la infección a través de la conjuntiva de los ojos también son
posibles.
El período de incubación se sitúa en la media de 5-6 días (y puede alcanzar um máximo de 14 días).
Las manifestaciones clínicas de la enfermedad COVID-19 relacionada con el SARS-CoV-2 incluyen fiebre, tos, problemas
respiratorios y fatiga. En la mayoría de los pacientes la infección se manifiesta con síntomas de una enfermedad febril leve con
infiltraciones pulmonares irregulares.
El signo clínico inicial de COVID-19 que permitió la detección del caso fue la neumonía. Pero resultó que el curso de laenfermedad no es específico y varía ampliamente, desde cursos asintomáticos hasta neumonía severa con insuficiencia
pulmonar y muerte. Sin embargo, según los conocimientos actuales, alrededor del 80 % de las enfermedades son leves amoderadas.
Aunque los cursos graves de la enfermedad también se producen en pacientes más jóvenes y en personas sin enfermedad
previa, los siguientes grupos de personas tienen un mayor riesgo de padecer formas graves de la enfermedad: personas de edadavanzada (con un riesgo cada vez mayor a partir de los 50-60 años de edad), fumadores y personas con determinadas
enfermedades del sistema cardiovascular o los pulmones, pacientes con enfermedades hepáticas crónicas, diabetes mellitus,
cáncer o pacientes con un sistema inmunológico debilitado (por ejemplo, debido a deficiencias inmunológicas o por tomar
medicamentos que suprimen el sistema inmunológico).
Actualmente, no existe un tratamiento o vacuna específicos contra la infección por SARS-CoV-2.
Especies
SARS-CoV-2(síndrome
respiratorio
agudo grave delcoronavirus 2)

Enfermedad

COVID-19

Síntomas (p.ej.)
El curso de la enfermedad es inespecífico,diverso y muy variable, desde cursos
asintomáticos hasta neumonía grave con
insuficiencia pulmonar y muerte

Vía de transmisión
Modo de transmisión primario:
infección por gotitas;
las infecciones de frotis y las
infecciones a través de la conjuntiva
de los ojos son teóricamente posibles

Detección de infecciones o de agentes patógenos de:▪
Prueba de ácidos nucleicos: p.ex. RT-PCR▪
Serología:
detección de anticuerpos por p.ex.ELISA

2. USO PREVISTOEl enzimoinmunoensayo SARS-CoV-2 (COVID-19) IgG ELISA se utiliza para la determinación cualitativa de anticuerpos IgG
específicos contra síndrome respiratorio agudo grave del coronavirus 2 en suero o plasma (citrato, heparina) humano para apoyarel diagnóstico de la enfermedad COVID-19 y es un complemento para la detección directa de patógenos. Además, la serología
puede utilizarse para reunir información epidemiológica sobre la prevalencia del SARS-CoV-2.

3. PRINCIPIO DEL ENSAYO
La determinación inmunoenzimático cualitativa de anticuerpos específicos se basa en la técnica ELISA (Enzyme-linked
Immunosorbent Assay).
Las Placas de Microtitulación están recubiertas con antígenos específicos unen a los anticuerpos de la muestra. Después delavar los pocillos para eliminar todo el material de muestra no unida, el conjugado de peroxidasa de rábano (HRP) se añade. Este
conjugado se une a los anticuerpos capturados. En una segunda etapa de lavado se retira el conjugado no unido. El complejo
inmune formado por el conjugado unido se visualizó añadiendo substrato tetrametilbencidina (TMB), que da un producto dereacción azul.
La intensidad de este producto es proporcional a la cantidad de anticuerpos específicos en la muestra. se añade ácido sulfúrico
para detener la reacción. Esto produce un cambio de color de azul a amarillo. La extinción a 450/620 nm se mide con un fotómetrode Placa de Microtitulación ELISA.

26

4. MATERIALES
4.1.

Reactivos suministrados▪

Placa de Microtitulación: 12 tiras de 8 pocillos rompibles, recubiertos con antígenos del SARS-CoV-2, en bolsa dealuminio.
▪
Tampón de Dilución de Muestras IgG: 1 botella de 100 mL de solución de tampón de fosfato (10 mM) para diluir lamuestra; pH 7,2 ± 0,2; color amarillo; listo para ser utilizado; tapa blanca; ≤ 0,0015% (v/v) CMIT/ MIT (3:1).
▪
Solución de Parada: 1 botella de 15 mL de ácido sulfúrico, 0,2 mol/L, listo para ser utilizado; tapa roja.
▪
Tampón de Lavado (20x conc.): 1 botella de 50 mL de una solución de tampón de fosfato 20x concentrado (0,2 M)
para lavar los pocillos; pH 7,2 ± 0,2; tapa blanca.
▪
Conjugado: 1 botella de 20 mL de conjugado de anticuerpos IgG anti-humano con peroxidasa en tampón de fosfato(10 mM); color azul; tapa negra; listo para ser utilizado.
▪
Solución de Sustrato de TMB: 1 botella de 15 mL 3,3’,5,5’-tetrametilbenzindina (TMB), < 0,1 %; listo para ser utilizado;
tapa amarilla.
▪
Control Positivo: 1 botella de 2 mL control; color amarillo; tapa roja; listo para ser utilizado; ≤ 0,02% (v/v) MIT.
▪
Control Cut-off: 1 botella de 3 mL control; color amarillo; tapa verde; listo para ser utilizado; ≤ 0,02% (v/v) MIT.
▪
Control Negativo: 1 botella de 2 mL control; color amarillo; tapa azul; listo para ser utilizado; ≤ 0,0015% (v/v) CMIT/ MIT(3:1).
Para indicaciones de peligro y consejos de prudencia consulte el cap. 12.1.
Para sustancias potencialmente peligrosas por favor revise la ficha de datos de seguridad.

4.2.

Accesorios suministrados▪
▪
▪

1 lámina autoadhesiva
1 instrucciones de uso
1 esquema de la placa

4.3.

Materiales e instrumentos necesarios

▪
▪
▪
▪
▪
▪
▪

Fotómetro de Placa de Microtitulación con filtros de 450/620 nm
Incubadora 37 °C
Dispositivo de lavado manual o automático para Placa de Microtitulación
Micropipetas para uso de (10-1000 µL)
Mezcladora Vortex
Agua destilada
Tubos de plástico desechables

5. ESTABILIDAD Y ALMACENAJE
Almacene el kit a 2...8 °C. Los reactivos abiertos son estables hasta la fecha de caducidad indicada en la etiqueta cuando sealmacena a 2...8 °C.

6. PREPARACIÓN DE LOS REACTIVOS
Es muy importante llevar Todos los reactivos y las muestras para a la temperatura ambiente (20...25 °C) y mezclarlos
antes de serem utilizados!

6.1.

Placa de Microtitulación

As tiras rompibles están recubiertas con antígenos del SARS-CoV-2; Inmediatamente después de la eliminación de las tiras, lastiras restantes deben sellarse de nuevo en el papel de aluminio junto con la bolsita di dióxio de silicio y almacenar a 2...8 °C.

6.2.

Tampón de Lavado (20x conc.)

Diluir la Tampón de Lavado 1+19; por ejemplo 10 mL de la Tampón de Lavado + 190 mL de agua destilada. La Tampón de
Lavado diluido es estable durante 5 días a temperatura ambiente o a 2...8 °C. Caso aparecen cristales en el concentrado, calentar
la solución a 37 °C, por ejemplo, en un baño María. Mezclar bien antes de la dilución.

6.3.

Solución de Sustrato de TMB

La solución está listo para su uso y debe almacenarse a 2...8 °C, protegida de la luz. La solución debe ser incolora o podría tener
un color ligeramente azul claro. Si el sustrato se convierte en azul, es posible que haya sido contaminado y no puede ser utilizada
en el ensayo.

7. TOMA Y PREPARACIÓN DE LAS MUESTRAS
Usar muestras de suero o plasma (citrato, heparina) humano. Si el ensayo se realiza dentro de 5 días después de la toma desangre, las muestras pueden ser almacenadas de 2...8 °C, en caso contrario debem ser alicotadas y almacenadas congeladas(-70...-20 °C). Agitar bien las muestras descongeladas antes de diluirlas. Evitar congelaciones y descongelaciones repetidas.
No se recomienda la inactivación por calor de las muestras.

7.1.

Dilución de las muestras

Antes del ensayo, las muestras tienen que estar diluidas en relación 1 + 100 con el Tampón de Dilución de Muestras IgG, p. e.
10 µL de la muestra con 1 mL de Tampón de Dilución de Muestras IgG, mezclar bien con la mezcladora Vortex.
27

8. PROCEDIMIENTO
Por favor, leer cuidadosamente las instrucciones de uso del ensayo antes de realizarlo. Para el buen funcionamiento de la técnica
es necesario seguir las instrucciones. El siguiente procedimiento es válido solamente para el método manual. Si se realiza elensayo en los sistemas automáticos de ELISA es aconsejable elevar el número de lavado de 3 hasta 5 veces y el volumen deTampón de Lavado de 300 µL a 350 µL para excluir efectos de lavado. Preste atención al capítulo 12. Antes de comenzar,
especificar exactamente la repartición y posición de las muestras y de los estándares/controles (recomienda determinar en doble)
en lo esquema de la placa suministrada. Usar la cantidad necesaria de tiras o pozos e insertarlos en el soporte.
Realizar el ensayo en el orden indicado y sin retraso.
Para cada paso de pipeteado en los estándares/controles y en las muestras, usar siempre puntas de pipeta de un solo uso.
Graduar la incubadora a 37  1 °C.
1. Pipetear 100 µL de estándares/controles y muestras en los pocillos respectivos. Dejar el pocillo A1 para el blanco.
2. Recubrir las tiras con los autoadhesivos suministrados.
3. Incubar 1 h ± 5 min a 37  1°C.
4. Después de la incubación, retirar el autoadhesivo, aspirar el líquido de la tira y lavarla tres veces con 300 µL de laTampón de Lavado. Evitar el rebosamiento de los pocillos. El intervalo entre lavado y aspiración debe ser > 5 segundos.
Para sacar el líquido restante de las tiras, es conveniente sacudirlas sobre papel absorbente.
Nota:
El lavado es muy importante! Un mal lavado insuficiente provoca una baja precisión y resultados falsamenteelevados!
5. Pipetar 100 µL de Conjugado en cada pocillo con excepción del blanco substrato A1.
6. Incubar 30 min a la temperatura ambiente (20…25 °C). Evitar la luz solar directa.
7. Repetir el lavado como en el paso numero 4.
8. Pipetar 100 µL de Solución de Sustrato de TMB en todos los pocillos.
9. Incubar exactamente 15 min en oscuridad a temperatura ambiente (20...25 °C). Un color azul se produce en las
muestras positivas debido a la reacción enzimática.
10. Pipetear en todos los pocillos 100 µL de la Solución de Parada en el mismo orden y mismo intervalo de tiempo comocon el Solución de Sustrato de TMB, por lo tanto un cambio de color de azul a amarillo se produce.
11. Medir la extinción con 450/620 nm en un periodo de 30 min después de añadir la Solución de Parada.

8.1.

Medición

Ajustar el fotómetro de Placa de Microtitulación ELISA al cero utilizando el Blanco.
Si por razones técnicas el fotómetro de Placa de Microtitulación de ELISA no se pueder ajustar a cero utilizando el Blanco, elvalor de la absorbancia desto debe ser sustraído de los demás valores de absorbancia medidos con el fin de obtener resultados
fiables!
Medir la extinción de todos los pocillos con 450 nm y anotar los resultados de los estándares/controles y de las muestras en laesquema de la placa.
Es aconsejable realizar la medición bicromática a una longitud de onda de referencia de 620 nm.
Si se efectuaron análisis en duplicado o múltiples, hay que calcular el promedio de los valores de extinción de los pocillos
correspondientes.

9. CALCULO DE LOS RESULTADOS
9.1.

Criterios de validez del ensayo

El ensayo es válido si se cumplen los siguientes criterios:▪
Blanco:valor de la extinción< 0,100▪
Control Negativo:
valor de la extinción< 0,200 y < Cut-off▪
Control Cut-off:valor de la extinción
0,150 – 1,300▪
Control Positivo:
valor de la extinción
Cut-off
Si estos criterios no se cumplen, la prueba no es váida y deberá repetirse.

9.2.

Calculo del valor de la medición

El Cut-off se obtiene de los valores de la extinción de los dos Controles Cut-off.
Ejemplo: 0,42 OD Control Cut-off + 0,44 OD Control Cut-off = 0,86:2 = 0,43
Cut-off = 0,43

9.2.1.

Resultados en unidades [NTU]

Promedio valor de la extinción de la muestra x 10 = [NovaTec-unidades = NTU]
Cut-off
Ejemplo:

1,591 x 10
0,43

= 37 NTU

28

9.3.

Interpretación de los resultados

Cut-off

10 NTU-

Positivo> 11 NTU

Los anticuerpos contra el patógeno están presentes. Ha producido uncontacto con el antígeno (patógeno resp. vacuna).

Zona intermedia

9 – 11 NTU

Los anticuerpos contra el patógeno no se pudieron detectar claramente.
Se recomienda repetir la prueba con una muestra fresca en 2 a 4 semanas.
Si el resultado es de nuevo en la zona intermedia, la muestra se consideracomo negativa.

Negativo< 9 NTU

La muestra no contiene anticuerpos contra el patógeno. Un contacto previo
con el antígeno (patógeno resp. vacuna) es poco probable.

El diagnóstico de una infección no solamente se debe basar en el resultado del ensayo.
Es necesario considerar la anamnésis y la sintomatología del paciente junto al resultado serológico.
Estos resultados sólo tienen valor restringido en pacientes inmunodeprimidos o en neonatos.

9.3.1.

Isotipos de anticuerpo y Estado de la Infección

Serología
IgM

Significado
Característica de la respuesta primaria del anticuerpo
Alto título de IgM → sugieren una infección muy reciente o aguda
Sigue la producción de IgM
Característica de la respuesta secundario del anticuerpo
Pueden persistir por varios años
El alto título de IgG con bajo título de IgM: → pueden indicar una infección pasada
Producida en el revestimiento mucoso en todo el cuerpo (⇒ Barrera Protectora)
Usualmente producida tempranamente en el transcurso de la infección

IgG

IgA

10. CARACTERÍSTICAS DEL ENSAYO
Los resultados están basados en lo gruppo de pruebas investigado; no se trata de especificaciones garantizadas.
Para obtener más información sobre las características del ensayo, por favor, entre en contacto NovaTec ImmundiagnosticaGmbH.

10.1. Precisión
Intra ensayo
#1
#2
#3

n
24
24
24

Promedio (E)
0,815
0,782
0,362

CV (%)
4,06
4,28
8,71

Inter ensayo
#1
#2
#3

n
12
12
12

Promedio (NTU)
16,43
12,76
7,05

CV (%)
7,37
4,11
8,65

10.2. Especificad diagnóstica
La especificidad del ensayo se define como la probabilidad que tiene el ensayo de dar un resultado negativo en ausencia delanalítico específico. Las infecciones por SARS-CoV-2 surgieron en diciembre de 2019 en Wuhan, China. Por lo tanto, los valores
de prevalencia esperados para los donantes de sangre alemanes y estadounidenses antes de diciembre de 2019 ascienden a
un 0 %.
Los resultados positivos determinados corresponden a una especificidad del 99,24 % (95 % Intervalo de confianza:
95,82 % - 99,98 %).
Colectivo deespecímenes
Donante de sangre
Alemania
Donante de sangre USA
Total

Número demuestras (n)Positivo

Zonaintermedia

Negativo

Especifidad(Z.i. excluidas)

83

0

1

82

100 %

50
133

1
1

0
1

49
131

98,00 %
99,24 %

29

95 % IC

95,82 % - 99,98 %10.3. Sensibilidad de diagnóstico
La sensibilidad del ensayo se define como la probabilidad que tiene el ensayo de dar un resultado positivo en presencia delanalítico específico. Se analizaron 42 muestras de 25 pacientes que dieron positivo en el ARN del SARS-CoV-2 por RT-PCR.
Días después de laaparición de los síntomas
0-5
6-8
9-11
≥ 12

Número demuestras (n)
13
10
10
9

Positivo
1
4
4
9

Zona
intermedia
00
00

Negativo
126
60Sensibilidad(Z.i. excluidas)7.69 %
40,00 %
40,00 %
100 %10.4. Interferencias
Se analizaron tres muestras clínicas que presentaban diferentes reactividades para detectar interferencias con cada una de lassustancias enumeradas en el cuadro que figura a continuación: una muestra positiva, una negativa y una equívoca. Todas lasmuestras mostraron un cambio de señal inferior al 15 % cuando se probaron con cada interferente potencial.
Sustancias que interfieren
Albúmina
La bilirrubina conjugada
Bilirrubina no conjugada
Colesterol
Hemoglobina
Triglicéridos

Concentration tested
60 mg/mL
0,4 mg/mL
0,4 mg/mL
4 mg/mL
10 mg/mL
15 mg/mL

10.5. Reactividad cruzada
Se probaron 131 muestras con actividades de anticuerpos a parámetros de reacción cruzada potencial (incluidos anticuerpos avarios patógenos respiratorios) para evaluar la reactividad cruzada del ensayo.
Las muestras dan positivo en
anticuerpos para
Adenovirus
Parainfluenzavirus
Cándida albicans
Bordetella pertussis
El virus de la gripe A
El virus de la gripe B
Enterovirus
Virus sincitial respiratorio
Chlamydia pneumoniae
Legionella pneumophila
Mycoplasma pneumoniae
Haemophilus influenzae
Coronavirus, excepto el SARS-CoV-2
Factor reumatoide positivo

Número de muestras
(n)
10
9
8
9
9
10
10
10
9
8
9
3
1
26

Positive

Equivocal

Negative

0
0
0
0
0
0
0
1
0
0
0
0
0
0

0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0

10
9
8
9
9
10
10
9
9
8
9
3
1
26

No se pueden excluir las reacciones cruzadas con los anticuerpos del contra el virus sincitial respiratorio. La reactividad cruzada
con otros coronavirus humanos debe considerarse para la interpretación de los resultados.

11. LIMITACIONES DEL ENSAYO
Una contaminación de las muestras con bacterias, o una congelación y descongelación repetida pueden producir cambios en losvalores de la extinción.

3012. PRECAUCIONES Y ADVERTENCIAS
▪

▪
▪
▪
▪
▪
▪
▪
▪
▪
▪
▪
▪

En cumplimiento con el artículo 1 párrafo 2b de la directiva europea 98/79/EC, la utilización de sistemas médicos paradiagnóstico in vitro tiene la intención por parte del fabricante de asegurar la adecuación, realizaciones y seguridad delproducto. Por lo tanto, el procedimiento, la información, las precauciones y los avisos de las instrucciones de uso han deser seguidas estrictamente. La utilización de equipos con analizadores y equipamiento similar tiene que ser validada. No seautorizan cambios en el diseño, composición y procedimiento, así como cualquier utilización en combinación con otros
productos no aprobados por el fabricante; el usuario debe hacerse responsable de estos cambios. El fabricante noresponderá ante falsos resultados e incidentes debidos a estas razones. El fabricante no responderá ante cualquier resultado
por análisis visual de las muestras de los pacientes.
Solo para diagnostico in vitro.
Todos los materiales di origen humana o animal deveram ser considerados y tratados como potencialmente infecciosos.
Todos los componentes de origen humano han sido examinados y resultaron no reactivos a anticuerpos contra el VIH, VHCy HbsAG.
No intercambiar reactivos y Placa de Microtitulación de cargas diferentes.
No usar reactivos de otro fabricante para este ensayo.
No usar después de la fecha de caducidad.
Sólo usar recambios de pipetas, dispensadores y materiales de laboratorio limpios.
No intercambiar las tapas de los diferentes reactivos, para evitar la contaminación cruzada.
Para evitar la evaporación y una contaminación microbiana, cierre inmediatamente las botellas después de usarlas.
Después de abrirlas y posterior almacenaje, asegurarse de que no existe contaminación microbiana antes de seguir
usándolas.
Para evitar contaminaciones cruzadas y resultados erróneamente aumentados, Pipetear cuidadosamente las muestras y
los reactivos en los pocillos sin salpicar.
El ELISA está pensado exclusivamente para su uso por personal especializado que domine perfectamente las técnicas detrabajo.

12.1. Nota de seguridad para los reactivos que contienen sustancias peligrosas
Los reactivos pueden contener CMIT/MIT (3:1) o MIT (consulte el cap. 4.1)
Por lo tanto, se aplican las indicaciones de peligro y consejos de prudencia.
Atención

H317
261
P280
P302+P352
P333+P313
P362+P364

Puede provocar una reacción alérgica en la piel.
Evitar respirar el aerosol.
Llevar guantes/prendas.
EN CASO DE CONTACTO CON LA PIEL: Lavar con abundante jabón agua.
En caso de irritación o erupción cutánea: Consultar a un médico.
Quitar las prendas contaminadas y lavarlas antes de volver a usarlas.

Se puede encontrar más información en la ficha de datos de seguridad.

12.2. Indicaciones para la eliminación de residuos
Por regla general, los productos químicos y las preparaciones son residuos peligrosos. Su eliminación esta sometida a las leyes
y los decretos nacionales sobre la eliminación de residuos. Las autoridades informan sobre la eliminación de residuos peligroso.

13. INFORMACIONES PARA PEDIDOS
N° del producto:

COVG0940

SARS-CoV-2 (COVID-19) IgG (96 determinaciones)

31

PORTUGUÊS
1. INTRODUÇÃO
No final de 2019, uma nova doença respiratória surgiu na cidade de Wuhan, província de Hubei da República Popular da China,
e logo se espalhou rapidamente no país e no mundo. O agente causador foi identificado como coronavírus 2 (SRA CoV 2),
síndrome respiratória aguda grave. O SRA-CoV-2 (2019-nCoV), tal como o vírus corona da SRA (SRA-CoV), pertence ao gênero
Betacoronavirus da família dos coronavírus. O reservatório zoonótico do vírus parece ser um morcego.
Os coronavírus são vírus de RNA grandes, de cadeia simples de senso positivos, que infectam seres humanos, mas também
uma grande gama de animais. Os coronavírus humanos comuns NL63, 229E, OC43 e HKU1 são comumente disseminados,
especialmente durante os meses de inverno. Eles são responsáveis por até um terço de todas as doenças respiratórias agudas,
tipicamente com sintomas leves (resfriado comum). Mais de 80% da população adulta tem anticorpos contra os coronavírus
humanos. A imunidade a infecções anteriores dura apenas por um curto período de tempo. Portanto, reinfecções com o mesmo
patógeno são possíveis logo após um ano.
A SRA-CoV-2 é predominantemente transmitida por infecção por gotículas através da tosse ou espirros e através do contacto
próximo com doentes infectados. Em teoria, a infecção por esfregaço e infecção através da conjuntiva dos olhos também épossível.
O período de incubação é em media de 5-6 dias (e pode chegar até 14 dias no máximo).
As manifestações clínicas da doença COVID-19 relacionada à SRA-CoV-2 incluem febre, tosse, problemas respiratórios e fadiga.
Na maioria dos pacientes a infecção manifesta-se com sintomas de uma doença febril leve com infiltrações pulmonares
irregulares.
O sinal clínico inicial do COVID‐19, que permitiu a detecção de casos, foi a pneumonia. Porém, o curso da doença é inespecífico
e varia amplamente, de cursos assintomáticos a pneumonia grave com insuficiência pulmonar e morte. Entretanto, com base no
conhecimento atual, cerca de 80% das doenças são de leve a moderada.
Embora cursos graves da doença também ocorram em pacientes mais jovens e pessoas sem doença prévia, os seguintes gruposde pessoas têm um risco aumentado de formas graves da doença: idosos (com um risco cada vez maior a partir dos 50-60 anosde idade), fumantes e pessoas com certas doenças do sistema cardiovascular ou dos pulmões, pacientes com doenças hepáticas
crônicas, diabetes mellitus, câncer ou pacientes com o sistema imunológico enfraquecido (por exemplo, devido a deficiências
imunológicas ou por tomar medicamentos que suprimem o sistema imunológico).
Atualmente, não há tratamento específico ou vacina disponível contra a infecção pelo SRA-CoV-2.
Espécies
SARS-CoV-2(Síndrome
respiratória
aguda grave docoronavirus 2)

DoençaCOVID-19

Sintomas (p.ex.)
O curso da doença é inespecífico, diverso e dediferentes grau de gravidade, desde cursos
assintomáticos a pneumonia grave com
insuficiência pulmonar e óbito

Via de transmissão
Modo primário de transmissão:infecção por gotículas;infecções por esfregaço e infecções
através da conjuntiva dos olhos são
teoricamente possíveisA presença de agentes patogênicos ou de infecção pode ser identificada através▪
Teste de ácido nucleico: p.ex. PCR-RT▪
Serologia:
detecção de anticorpos por p.ex. ELISA

2. UTILIZAÇÃO PRETENDIDA
O kit SARS-CoV-2 (COVID-19) IgG ELISA destina-se à determinação qualitativa de anticorpos da classe IgG contra a síndrome
respiratória aguda grave do coronavirus 2 no soro ou plasma (citrato, heparina) humanos para apoiar o diagnóstico da doença
COVID-19 e constitui um suplemento para a detecção direta de agentes patogénicos. Além disso, a serologia pode ser utilizada
para recolher informações epidemiológicas sobre a prevalência da SRA-CoV-2.

3. PRINCÍPIO DO ENSAIO
A determinação imunoenzimática qualitativa de anticorpos específicos é baseado na técnica de ELISA (do inglês Enzyme-linked
Immunosorbent Assay).
As Placas de Microtitulação são revestidas com antigénios específicos que se ligam os anticorpos correspondentes da amostra.
Após lavagem dos poços, para remover todo o material de amostra não ligada, um conjugado de peroxidase de rábano (HRP) é
adicionado. Este conjugado se liga aos anticorpos capturados. Num segundo passo de lavagem o conjugado não ligado é
removido. O complexo imune formado pelo conjugado ligado é visualizado por adição de substrato de tetrametilbenzidina (TMB),o que dá um produto de reacção azul.
A intensidade deste produto é proporcional à quantidade de anticorpos específicos da amostra. O ácido sulfúrico é adicionado
para parar a reacção. Isso produz uma mudança de cor de azul para amarelo. Absorvância a 450/620 nm é lida utilizando um
fotômetro para Placa de Microtitulação ELISA.

32

4. MATERIAIS
4.1.

Reagentes fornecidos▪

Placa de Microtitulação: 12 tiras de 8 poços, destacáveis e quebráveis, revestidas com antigénio do vírus SARS-CoV2, em bolsas de folha de alumínio com fecho.
▪
Tampão de Diluição de Amostra IgG: 1 frasco contendo 100 mL de tampão fosfato (10 mM) para diluição da amostra,
pH 7,2 ± 0,2; de cor amarela; pronto a usar; tampa branca; ≤ 0,0015% (v/v) CMIT/ MIT (3:1).
▪
Solução de Bloqueio: 1 frasco contendo 15 mL ácido sulfúrico; 0,2 mol/L; pronto a usar; tampa vermelha.
▪
Tampão de Lavagem (conc. 20x): 1 frasco contendo 50 mL de um tampão fosfato (0,2 M); concentrado 20 vezes(pH 7,2 ± 0,2) para a lavagem dos poços; tampa branca.
▪
Conjugado: 1 frasco contendo 20 mL de anticorpo IgG anti-humana marcados com peroxidase no tampão fosfato(10 mM); de cor azul, pronto a usar; tampa preta.
▪
Solução Substrato TMB: 1 frasco contendo 15 mL de 3,3',5,5'-tetrametilbenzidina (TMB), < 0,1 %; pronto a usar; tampa
amarela.
▪
Controle Positivo: 1 frasco contendo 2 mL controle; de cor amarela; pronto a usar; tampa vermelha. ≤ 0,02% (v/v) MIT.
▪
Controle Cut-off: 1 frasco contendo 3 mL controle; de cor amarela; pronto a usar; tampa verde. ≤ 0,02% (v/v) MIT.
▪
Controle Negativo: 1 frasco contendo 2 mL controle; de cor amarela; pronto a usar; tampa azul; ≤ 0,0015% (v/v) CMIT/
MIT (3:1).
Para advertências de perigo e recomendaçaões de prudência ver capitulo 12.1.
Para substâncias potencialmente perigosas verifique a ficha de dados de segurança.

4.2.

Materiais fornecidos▪
▪
▪

1 Película de cobertura
1 Instruções de uso
1 Layout da placa

4.3.

Materiais e Equipamento necessários

▪
▪
▪
▪
▪
▪
▪

Fotômetro para Placa de Microtitulação ELISA, equipado para a medição da absorvância a 450/620 nm
Incubadora 37 °C
Equipamento manual ou automático para a lavagem da Placa de Microtitulação
Pipetas para dispensar volumes entre 10 e 1000 µL
Agitador de tubos tipo VortexÁgua destilada
Tubos descartáveis

5. ESTABILIDADE E ARMAZENAMENTO
Armazene o kit a 2...8 °C. Os reagentes abertos são estáveis até o prazo de validade impresso no rótulo quando armazenado a2...8 °C.

6. PREPARAÇÃO DOS REAGENTES
É muito importante deixar todos os reagentes e amostras estabilizar à temperatura ambiente (20...25 °C) e
misturálos antes de iniciar o teste!

6.1.

Placa de Microtitulação

As tiras quebraveis são revestidas com antigénio do vírus SARS-CoV-2. Imediatamente após a remoção das tiras necessarias,
as tiras restantes devem ser lacradas de novo na folha de alumínio juntamente com o saquinho de silicio fornecido e armazenadara 2...8 °C.

6.2.

Tampão de Lavagem (conc. 20x)

Diluir o Tampão de Lavagem 1+19; por exemplo: 10 mL do Tampão de Lavagem + 190 mL de água destilada. O Tampão deLavagem diluído é estavel durante 5 dias à temperatura ambiente (20...25 °C). Caso apareça cristais no concentrado, aquecer asolução a 37 °C por exemplo, em banho Maria. Misture bem antes da diluição.

6.3.

Solução Substrato TMB

A solução está pronta para uso e tem de ser armazenada à 2...8 °C, protegida da luz. A solução deve ser incolor ou poderia ter
uma ligeira coloração azul claro. Se o substrato se transforma em azul, pode ter sido contaminado e não pode ser usado no
teste.

7. COLHEITA E PREPARAÇÃO DAS AMOSTRAS
Usar com este ensaio amostras de soro ou plasma (citrato, heparina) humanos. Se o ensaio for realizado dentro de 5 dias após
colheita da amostra, o espécime deve ser mantido a 2…8 °C; caso contrário devem ser alicotadas e armazenadas congeladas(-70...-20 °C). Se as amostras forem armazenadas congeladas, misturar bem as amostras descongeladas antes de testar. Evitar
congelar e descongelar repetidamente. Não é recomendada a inactivação por calor das amostras.

33

7.1.

Diluição das amostras

Antes de testar todas as amostras devem ser diluídas 1 + 100 com Tampão de Diluição de Amostra IgG. Dispensar 10 µL deamostra e 1 mL de Tampão de Diluição de Amostra IgG em tubos para obter uma diluição 1 + 100 e misturar meticulosamente
com um vortex.

8. PROCEDIMENTO DO ENSAIO
Por favor, ler atentamente as instruções de uso antes de realizar o teste. A fiabilidade dos resultados depende da adesão estrita
ao as instruções de uso, conforme descritas. O procedimento de ensaio a seguir está validado apenas para o procedimento
manual. Se o teste for realizado em sistemas automáticos para teste ELISA é recomendável aumentar os passos de lavagem detrês até cinco e o volume do Tampão de Lavagem de 300 μL para 350 μL para evitar efeitos de lavagem. Preste atenção ao
capítulo 12. Antes de iniciar o teste, o plano de distribuição e identificação de todas as amostras e calibradores/controles (érecomendado determinar em duplicidade) deve ser cuidadosamente estabelecido no Layout da placa fornecida no kit. Seleccionaro número necessário de tiras ou poços e inserir os mesmos no suporte.
Realizar todas as etapas do teste na ordem indicada e sem atrasos significativos.
Na pipetagem deve ser utilizada uma ponta limpa e descartável para dispensar cada controle e amostra.
Ajustar a incubadora para 37 ± 1 °C.
1. Dispensar 100 µL dos calibradores/controles e das amostras diluídas nos poços respectivos. Deixar o poço A1 vazio
para o branco substrato.
2. Cobrir os poços com a película fornecida no kit.
3. Incubar durante 1 hora ± 5 min a 37 ± 1 °C.
4. Quando terminar a incubação, remover a película, aspirar o conteúdo dos poços e lavar cada poço três vezes com
300 µL de Tampão de Lavagem. Evitar que os poços de reacção transbordem. O intervalo entre a lavagem e a aspiração
deve ser > 5 seg. No final, retirar cuidadosamente o fluido restante batendo delicadamente as tiras sobre papel
absorvente, antes da próxima etapa!
Nota:
A lavagem é muito importante! Lavagem insuficiente resulta em baixa precisão e falsos resultados.
5. Dispensar 100 µL de Conjugado em todos os poços, excepto no poço do Branco substrato A1.
6. Incubar durante 30 min à temperatura ambiente (20...25 °C). Não expor diretamente à luz solar.
7. Repetir a etapa 4.
8. Dispensar 100 µL de Solução Substrato TMB em todos os poços.
9. Incubar durante exactamente 15 min à temperatura ambiente (20...25 °C) e no escuro. A cor azul devido a uma
reacção enzimática.
10. Dispensar 100 µL de Solução de Bloqueio em todos os poços, pela mesma ordem e com a mesma velocidade a que foi
dispensada a Solução Substrato TMB,desse modo uma mudança de cor de azul para amarelo ocorre.
11. Medir a absorvância a 450/620 nm dentro de 30 min após a adição da Solução de Bloqueio.

8.1.

Medição

Ajustar o fotômetro para Placa de Microtitulação ELISA a zero usando o Branco substrato.
Se - devido à razões técnicas – o leitor ELISA não puder ser ajustado a zero usando o Branco substrato, valor da absorvância
deste deve ser subtraido de todos os outros valores de absorvância medidos de forma a obter resultados fiáveis!
Medir a absorvância de todos os poços a 450 nm e registar os valores da absorvância para cada calibrador/controle e amostra
no Layout da placa.
É recomendado fazer a medição dicromática usando como referência um comprimento de onda de 620 nm.
Se determinações duplas foram realizadas, calcular os valores médios de absorvância.

9. RESULTADOS
9.1.

Critérios de validação do ensaio

Para que um ensaio seja considerado válido, devem ser cumpridos os seguintes critérios:▪
Branco substrato:
Valor de Absorvância
< 0,100▪
Controle Negativo:
Valor de Absorvância
< 0,200 e < Cut-off▪
Controle Cut-off:Valor de Absorvância
0,150 – 1,300▪
Controle Positivo:
Valor de Absorvância> Cut-off
Se estes critérios não forem cumpridos, o teste não é válido e deve ser repetido.

9.2.

Cálculo dos Resultados

O Cut-off é o valor médio da absorvância das determinações do Controle Cut-off.
Exemplo:
Valor da absorvância do Controle Cut-off 0,44 + valor da absorvância do Controle Cut-off 0,42 = 0,86 : 2 = 0,43
Cut-off = 0,4334

9.2.1.

Resultados em Unidades [NTU]

Valor da absorvância (média) da amostra x 10 = [Unidades NovaTec = NTU]
Cut-off
Exemplo:

9.3.

1,591 x 10
0,43

= 37 NTU

Interpretação dos Resultados

Cut-off

10 NTU-

Positivo> 11 NTU

Os anticorpos contra o agente patogȇnico estão presente. Houve um contacto
com o antigénio (patógeno resp vacina).

Zona cinzenta

9 – 11 NTU

Os anticorpos contra o agente patogȇnico não puderam ser claramente
detectados.
Recomenda-se a repetir o teste com uma amostra fresca em 2 a 4 semanas.
Se o resultado estiver novamente dentro da zona cinzenta, a amostra é
julgada como negativa.

Negativo< 9 NTU

A amostra não contém os anticorpos contra o agente patogȇnico.
Um contato prévio com o antígeno (patógeno resp. vacina) é improvável.

O diagnóstico de uma doença infecciosa não deve ser estabelecido com base num único resultado do teste.
Um diagnóstico preciso deve ter em consideração a história clínica, a sintomatologia bem como dados serológicos.
Em pacientes imunossuprimidos e recém-nascidos os dados serológicos têm apenas valor restrito.

9.3.1.

Isotipos de anticorpos e Estado da Infecção

Sorologia
IgM
IgG

IgA

Significado
Característica da resposta primária do anticorpo
Alto título de IgM: → sugere uma infecção muito recente ou aguda
Segue a produção de IgM
Característica da resposta secundária do anticorpo
Podem persistir por vários anos
Alto título de IgG com baixo título de IgM: → pode indicar uma infecção passada
Eles são produzidos a nível das mucosas em todo o corpo (⇒ barreira protectora)
Geralmente são producidas no inicio infecção

10. CARACTERÍSTICA DE DESEMPENHO ESPECÍFICASOs resultados referem-se aos grupos de amostras investigados; estas não são especificações garantidas.
Para mais informações sobre as características de desempenho específicas, por favor, entre em contato NovaTec
Immundiagnostica GmbH.

10.1. Precisão
Intra ensaio
#1
#2
#3

n
24
24
24

Média (E)
0,815
0,782
0,362

CV (%)
4,06
4,28
8,71

Inter ensaio
#1
#2
#3

n
12
12
12

Média (NTU)
16,43
12,76
7,05

CV (%)
7,37
4,11
8,65

10.2. Especificidade Diagnóstica
A especificidade diagnóstica é definida como a probabilidade do ensaio ser negativo na ausência do analito específico.
As infecções pelo SARS-CoV-2 surgiram em dezembro de 2019 em Wuhan, China. Os valores esperados de prevalência paradoadores de sangue alemães e americanos antes de dezembro de 2019 são, portanto, de 0 %.
Os resultados positivos determinados correspondem a uma especificidade de 99,24 % (95 %-Intervalo de confiança:
95,82 % - 99,98 %).
Coletivo de Amostra
Doador de sangue
Alemanha
Doador de sangue USA
Total

Número deamostras (n)Positivo

Zonacinzenta

Negativo

Especificidade(Z.c. excluídas)

83

0

1

82

100 %

50
133

1
1

0
1

49
131

98,00 %
99,24 %

35

95 % IC

95,82 % - 99,98 %10.3. Sensibilidade Diagnóstica
A sensibilidade diagnóstica é definida como a probabilidade do ensaio ser positivo na presença do analito específico. Se
analizaron 42 muestras de 25 pacientes que dieron positivo en el ARN del SARS-CoV-2 por PCR-RT.
Dias após o início dos
sintomas
0-5
6-8
9-11
≥ 12

Número deamostras (n)
13
10
10
9

Positivo

Zona cinzenta

Negativo

1
4
4
9

0
0
0
0

12
6
6
0

Sensibilidade(Z.c. excluídas)7.69 %
40,00 %
40,00 %
100 %10.4. InterferênciasTrês amostras clínicas exibindo diferentes reatividades foram testadas para interferência com cada substância listada na Tabela
abaixo: uma amostra positiva, uma negativa e uma equivocada. Todas as amostras exibiram uma mudança de sinal inferior a
15 % quando testadas com cada interferente potencial.
Substância de Interferência

Concentração testadaAlbumina
Bilirrubina conjugada
Bilirrubina não conjugada
Colesterol
Hemoglobina
Triglicérides

60 mg/mL
0,4 mg/mL
0,4 mg/mL
4 mg/mL
10 mg/mL
15 mg/mL

10.5. Reacção cruzada
Foram testadas 131 amostras com atividades de anticorpos a parâmetros potencialmente reativos cruzados (incluindo anticorposa vários patógenos respiratórios) para avaliar a reatividade cruzada do ensaio.
Amostras positivas para anticorpos
para
Adenovirus
Parainfluenzavirus
Candida albicans
Bordetella pertussis
Influenzavirus A
Influenzavirus B
Enterovirus
Vírus sincítico respiratório
Chlamydia pneumoniae
Legionella pneumophila
Mycoplasma pneumoniae
Haemophilus influenzae
Coronavirus, exceto o SARS-CoV-2
Factor reumatóide positivo

Número de amostras
(n)
10
9
8
9
9
10
10
10
9
8
9
3
1
26

Positivo

Zona cinzenta

Negativo

0
0
0
0
0
0
0
1
0
0
0
0
0
0

0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0

10
9
8
9
9
10
10
9
9
8
9
3
1
26

Reações cruzadas com anticorpos para vírus sincítico respiratório não podem ser excluídas. A reatividade cruzada com outros
coronavírus humanos deve ser considerada para a interpretação dos resultados.

11. LIMITAÇÕES DO PROCEDIMENTO
Contaminação bacteriana ou a repetição de ciclos de congelação-descongelação do espécime podem afectar os valores daabsorvância.

12. PRECAUÇÕES E AVISOS
▪

▪
▪
▪
▪
▪

Em cumprimento com o artigo 1 parágrafo 2b da directiva Europeia 98/79/EC o uso de dispositivos médicos para diagnósticoin vitro destina-se segundo o fabricante a assegurar adequabilidade, desempenhos e segurança do produto. Portanto oprocedimento do teste, as informações, as precauções e avisos nas instruções para utilização têm de ser rigorosamente
seguidas. O uso de kits de teste com analisadores e equipamento similar tem de ser validado. Qualquer alteração no
desenho, composição e procedimento do teste bem como qualquer utilização em combinação com outros produtos não
aprovados pelo fabricante não estão autorizados; o próprio utilizador é responsável por tais alterações. O fabricante não é
legalmente responsável por resultados falsos e incidentes originados por estes motivos. O fabricante não é legalmente
responsável por quaisquer resultados obtidos por análise visual das amostras dos pacientes.
Apenas para uso no diagnóstico in-vitro.
Todos os materiais de origem humana ou animal devem ser considerados e tratados como potencialmente infectantes.
Todos os componentes de origem humana usados para a produção destes reagentes foram testados para anticorpos antiHIV, anticorpos anti-HCV e HBsAg e foram considerados não-reactivos.
Não trocar e/ou juntar reagentes ou Placa de Microtitulação de lotes de produção diferentes.
Nenhuns reagentes de outros fabricantes devem ser usados juntamente com reagentes deste kit de teste.
36

▪
▪
▪
▪
▪
▪

Não usar reagentes após a data de validade indicada no rótulo.
Usar apenas pontas de pipeta, dispensadores e material de laboratório limpos.
Não trocar as tampas dos frascos dos reagentes para evitar contaminação cruzada.
Fechar firmemente os frascos dos reagentes imediatamente após a utilização para evitar evaporação e contaminação
microbiana.
Após a primeira abertura e armazenamento subsequente verificar se existe contaminação microbiana dos frascos do
conjugado e dos calibradores/controles antes de utiliza-los novamente.
Para evitar contaminação-cruzada e resultados falsamente elevados, pipetar as amostras dos pacientes e dispensar oreagentes precisamente nos poços sem salpicar.
O ELISA foi desenhado apenas para pessoal qualificado e que esteja familiarizado com boas práticas laboratoriais

12.1. Nota de segurança para reagentes que contenham substâncias perigosas
Os reagentes podem conter CMIT/MIT (3:1) ou MIT (ver capitulo 4.1)
Portanto, as seguintes advertências de perigo e recomendações de prudência aplicam-se.
Atenção

H317
P261
P280
P302+P352
P333+P313
P362+P364

Pode provocar uma reacção alérgica cutânea.
Evitar respirar os aerossóis.
Usar luvas de protecção/vestuário de protecção.
SE ENTRAR EM CONTACTO COM A PELE: lavar abundantemente com sabão águaEm caso de irritação ou erupção cutânea: consulte um médico.
Retirar a roupa contaminada e lavá-la antes de a voltar a usar.

Mais informações podem ser encontradas na ficha de dados de segurança.

12.2. Considerações de Eliminação
Resíduos de químicos e preparações são geralmente considerados como resíduos perigosos. A eliminação deste tipo deresíduos está regulada por leis e normativas nacionais e regionais. Contactar as autoridades locais ou empresas de gestão de
resíduos as quais podem aconselhar sobre como eliminar resíduos perigosos.

13. INFORMAÇÃO DE PEDIDO
Prod. No.:

COVG0940

SARS-CoV-2 (COVID-19) IgG (96 Determinações)37

BIBLIOGRAPHY / LITERATUR / BIBLIOGRAPHIE / BIBLIOGRAFIA / BIBLIOGRAFIA /BIBLIOGRAFIA
Gorbalenya, Alexander E.; Baker, Susan C.; Baric, Ralph S.; Groot, Raoul J. de; Drosten, Christian; Gulyaeva, Anastasia A. et
al. (2020): Severe acute respiratory syndrome-related coronavirus: The species and its viruses – a statement of the Coronavirus
Study Group (14). bioRxiv 2020.02.07.937862; doi: https://doi.org/10.1101/2020.02.07.937862
Gralinski, Lisa E.; Menachery, Vineet D. (2020): Return of the Coronavirus: 2019-nCoV. In Viruses 12 (2). DOI:
10.3390/v12020135.
RKI (Ed.): SARS-CoV-2 Steckbrief zur Coronavirus-Krankheit-2019 (COVID-19).
Available online at https://www.rki.de/DE/Content/InfAZ/N/Neuartiges_Coronavirus/Steckbrief.html. (accessed: 13.04.2020)
Wang, Guan; Jin, Xian (2020): The progress of 2019 novel coronavirus event in China. In Journal of medical virology 92 (5),pp. 468–472. DOI: 10.1002/jmv.25705.
WHO: Clinical management of severe acute respiratory infection (SARI) when COVID-19 disease is suspected. Interim
guidance. 13 March 2020.
Available online at https://www.who.int/publications-detail/clinical-management-of-severe-acute-respiratory-infection-whennovel-coronavirus-(ncov)-infection-is-suspected, accessed: 13.04.2020.
Xiao, Shu-Yuan; Wu, Yingjie; Liu, Huan (2020): Evolving status of the 2019 novel coronavirus infection: Proposal of
conventional serologic assays for disease diagnosis and infection monitoring. In Journal of medical virology 92 (5), pp. 464–467.
DOI: 10.1002/jmv.25702.
Zhou, Peng; Yang, Xing-Lou; Wang, Xian-Guang; Hu, Ben; Zhang, Lei; Zhang, Wei et al. (2020): A pneumonia outbreakassociated with a new coronavirus of probable bat origin. In Nature 579 (7798), pp. 270–273. DOI: 10.1038/s41586-020-2012-7.

ABBREVIATIONS / ABKÜRZUNGEN / ABRÉVIATIONS / ABBREVIAZIONI / ABREVIACIÓNES /ABREVIATURAS
CMIT

5-chloro-2-methyl-4-isothiazolin-3-one

MIT

2-methyl-2H-isothiazol-3-one

38

SYMBOLS KEY / SYMBOLSCHLÜSSEL / EXPLICATION DES SYMBOLES / LEGENDA /SIMBOLOS / TABELA DE SIMBOLOS
Manufactured by / Hergestellt von / Fabriqué par / Prodotto da / Fabricado por /Fabricado por

IVD

In Vitro Diagnostic Medical Device / In Vitro Diagnosticum / Dispositif médical dediagnostic in vitro / Diagnostico in vitro / Producto para diagnóstico In vitro / Dispositivo
Médico para Diagnóstico In Vitro

LOT

Lot Number / Chargenbezeichnung / Numéro de lot / Lotto / Número de lote / Número
de loteExpiration Date / Verfallsdatum / Date de péremption / Scadenza / Fecha de caducidad/ Data de Validade
Storage Temperature / Lagertemperatur / Température de conservation / Temperatura
di conservazione / Temperatura de almacenamiento / Temperatura de Armazenamento
CE Mark / CE-Zeichen / Marquage CE / Marchio CE / Marca CE / Marca CE

REF

Catalogue Number / Katalog Nummer / Référence du catalogue / Numero di codice /Número de Catálogo / Número de Catálogo
Consult Instructions for Use / Arbeitsanleitung beachten / Consulter la noticed’utilisation / Consultare le istruzioni per l’uso / Consulte las Instrucciones de Uso /Consultar as Instruções de Utilização

MTP

Microtiterplate / Mikrotiterplatte / Plaque de Microtitrage / Piastre di Microtitolazione /Placa de Microtitulación / Placa de Microtitulação

CONJ

Conjugate / Konjugat / Conjugué / Coniugato / Conjugado / Conjugado

CONTROL│-

Negative Control / Negativkontrolle / Contrôle Négatif / Controllo Negativo / Control
Negativo / Controle Negativo

CONTROL│+

Positive Control / Positivkontrolle / Contrôle Positif / Controllo Positivo /Control Positivo / Controle Positivo

CUT OFF

Cut-off Control / Cut-off Kontrolle / Contrôle Cut-off / Controllo Cut-off /Control Cut-off / Controle Cut-off

DIL│G

IgG Sample Dilution Buffer / IgG-Probenverdünnungspuffer / Tampon de Dilutiond’Échantillon IgG / Tampone di Diluizione del Campione IgG / Tampón de dilución deMuestras IgG / Tampão de Diluição de Amostra IgG

SOLN│STOP

Stop Solution / Stopplösung / Solution d’Arrêt / Soluzione Bloccante / Solución de
Parada /Solução de Bloqueio

SUB│TMBTMB Substrate Solution / TMB-Substratlösung / Solution de Substrat TMB / Soluzione
Substrato TMB / Solución de Sustrato de TMB / Solução Substrato TMB

WASH│BUF│20x

Washing Buffer 20x concentrated / Waschpuffer 20x konzentriert / Tampon de Lavage
concentré 20 x / Tampone di Lavaggio concentrazione x20 / Tampón de Lavado
concentrado x20 / Tampão de Lavagem concentrada 20x
Contains sufficient for “n” tests / Ausreichend für “n” Tests / Contenu suffisant pour “n”
tests / Contenuto sufficiente per “n” saggi / Contenido suficiente para ”n” tests /Conteúdo suficiente para “n” testes

39SUMMARY OF TEST PROCEDURE / KURZANLEITUNG TESTDURCHFÜHRUNG / RÉSUMÉ DE LA
PROCEDURE DE TEST / SCHEMA DELLA PROCEDURA / RESUMEN DE LA TÉCNICA / RESUMODO PROCEDIMENTO DE TESTESCHEME OF THE ASSAY
SARS-CoV-2 (COVID-19) IgG

Test Preparation
Prepare reagents and samples as described.
Establish the distribution and identification plan for all samples and standards/controls on the platelayout supplied in the kit.
Select the required number of Microtiter strips or wells and insert them into the holder.

Assay Procedure(A1)

Negative
Control

Cut-off
Control

Positive
Control(diluted 1+100)

Negative Control-

100 µL---

Cut-off Control--

100 µL--

Positive Control

-

-

-

100 µL-

Sample----100 µL

Substrate Blank(diluted 1+100)

SampleCover wells with foil supplied in the kit
Incubate for 1 h at 37±1 °C
Wash each well three times with 300 µLof Washing Buffer
Conjugate-

100 µL100 µL100 µL100 µL

Incubate for 30 min at room temperature (20...25 °C)
Do not expose to direct sunlight
Wash each well three times with 300 µL of Washing Buffer
TMB Substratesolution

100 µL100 µL100 µL100 µL100 µL

Incubate for exactly 15 min at room temperature (20...25 °C) in the dark
Stop Solution

100 µL100 µL100 µL100 µL100 µL

Photometric measurement at 450 nm(reference wavelength: 620 nm)

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