目次 （Contents )研究活動 (Research Activity)
植物ストレス科学共同研究コア (Research Core for Plant Stress Science)
大気環境ストレスユニット (Atmospheric Stress Unit)
光環境適応研究グループ(Plant Light Acclimation Research Group) ･････････････････････････････
環境応答機構研究グループ(Group of Environmental Response Systems) ･･････････････････････････
土壌環境ストレスユニット (Soil Stress Unit)
植物ストレス学グループ(Group of Plant Stress Physiology) ････････････････････････････････････
植物分子生理学グループ(Group of Plant Molecular Physiology) ･････････････････････････････････
環境生物ストレスユニット (Biotic Stress Unit)
植物・微生物相互作用グループ(Group of Plant-Microbe Interactions) ･････････････････････････････････
植物・昆虫間相互作用グループ(Group of Plant-Insect Interactions) ･･･････････････････････････････････

1
2
3
4
5
6

大麦・野生植物資源研究センター (Barley and Wild Plant Resource Center)
遺伝資源ユニット (Genetic Resources Unit)
ゲノム多様性グループ(Group of Genome Diversity) ･････････････････････････････････････････ 7
遺伝資源機能解析グループ(Group of Genetic Resources and Functions) ･･･････････････････････････ 8
野生植物グループ(Group of Wild Plant Science) ･････････････････････････････････････････ 9
ゲノム育種ユニット (Applied Genomics Unit)
核機能分子解析グループ(Group of Nuclear Genomics) ･････････････････････････････････････････ 10
ゲノム制御グループ(Group of Genome Regulation) ････････････････････････････････････････ 11
次世代作物共同研究コア (Research Core for Future Crops)
作物デザイン研究チーム(Crop Design Research Team) ･････････････････････････････････････････ 13
国際共同研究チーム(International Collabolation Team) ････････････････････････････････････ 13
エコフィジオロジー研究チーム (Ecophysiology Research Team)
イオンダイナミクス班(Ion Dynamics Section）･････････････････････････････････････････････ 14
根圏生態班(Rhizosphere Microbiome Section）･･･････････････････････････････････ 14
作物イノベーション研究チーム(Crop Innovation Research Team)
エピジェネティクス班(Epigenetics Section）････････････････････････････････････････････････ 15
オオムギ遺伝子改変班(Barley Genetic Modification Section）････････････････････････････････ 15
構成員(Staff) ･･･････････････････････････････････････････････････････････････････････ 16
出版物リスト(List of Publication) ･･････････････････････････････････････････････････････････ 23
国際会議およびシンポジウム(List of International Conferences and Symposia) ･････････････････････････････････ 30
講演およびシンポジウム発表(List of Domestic Conferences and Symposia) ･･･････････････････････････････････ 35
研究所員が主催したシンポジウム等(List of Symposium Superintended by the Member of Institute) ･･････････････････ 44
学会賞等(Awards) ････････････････････････････････････････････････････････････････････ 53
共同研究リスト(共同利用・共同研究拠点事業)(List of Joint Projects at the Joint Usage/ Research Center)研 究 活 動 (Research Activity)(Atmospheric Stress Unit)

大気環境ストレスユニット
光環境適応研究グループ

Plant Light Acclimation Research Group

本グループでは、光合成機能を担うオルガネラである葉緑

Our group has been studying plant adaptation toenvironmental stresses at the molecular level. Especially,
we have been focusing on chloroplasts that participate in
the energy transfer systems of photosynthesis.

体(色素体)の分化と維持の分子機構に注目し、環境ストレス
下での葉緑体の機能解析ならびに色素体の多面的な機能について様々な手法を用いて研究を行っている。

1. Quantitative trait locus (QTL) analysis of stay-green
phenotype in sorghum
Stay-green is an important agronomic trait for plants,
possibly leading to higher yield and biomass. Currently, weare trying to identify new QTL of sorghum stay-green byusing 252 recombinant inbred lines (RILs), which wereobtained from a cross between a stay-green parent(BTx623) and a faster senescing parent (NOG).

１．ステイグリーンと作物生産性の向上に関する解析
植物において、葉の光合成能が持続するステイグリーン形
質は農業上有用な形質になり得る。我々はソルガム(Sorghum

bicolor)の 2 系統(NOG 及び BTx623)から作出した組換え自植系統を用いて QTL 解析を進めており、新規なステイグリーン遺伝子の同定及びステイグリーンに関する分子機構の解明を行っている。

2. Molecular mechanism of organellar DNA degradation
during plant senescence
In plant cells, mitochondria and plastids contain theirown genomes derived from the ancestral bacteria
endosymbiont. Despite their limited genetic capacity, these
multicopy organelle genomes account for a substantial
fraction of total cellular DNA, raising the question ofwhether and how organelle DNA quantity is controlled
spatially or temporally. Now, we are studying the organelle
DNA degradation in leaves during senescence using
Arabidopsis mutants.

２．オルガネラ DNA の代謝機構に関する研究
葉緑体内部に保持されている葉緑体 DNA は、葉の老化初期に分解されている。我々が花粉において同定したオルガネ
ラ DNA 分解酵素（DPD1 エキソヌクレアーゼ）は老化葉においてもその発現が誘導されており、老化葉で何らかの生理学的機能を持つことが予想された。シロイヌナズナ突然変異体を用いた解析の結果、変異体はステイグリーンを示し、葉老化における葉緑体遺伝子発現の抑制が遅延することが明らかとなった。葉緑体 DNA の老化葉での積極的な分解が、新
たな養分転流に寄与する可能性について現在解析を進めている。

3. D1 fragmentation in photosystem II repair under
different photo-damage
A major target site of photo-damage is a reaction center
protein, D1 in photosystem II. We tested whether the D1
degradation process can be affected by qualitatively
different photo-damage that occurs according to thetwo-step model. The significant increase in D1
fragmentation under blue light irradiation suggested thatprimary damage resulting from the absorption of lightenergy in the Mn-cluster in the two-step model was
involved in D1 fragmentation.

３．光色の違いによる光化学系 II タンパク質分解メカニズムの変化
光化学系 II は光エネルギー転換の初期反応を担うが、光傷害を最も受けやすい。光損傷メカニズムは過剰な光エネルギ
ーによる損傷と Mn クラスターの崩壊が引き金となる損傷(Two-step 説)が提唱されており、後者は短波長の光(紫外光~青色)で起き易い。異なる光色が反応中心タンパク質 D1 の分解に及ぼす影響を解析した結果、青色光下で D1 断片化が促進される一方、赤色光下で断片化が抑制された。この結果は
Two-step 説による損傷が D1 断片化に関連することを示唆した。
４．澱粉粒の形状多様性を支配する分子機構の解析
澱粉粒は、植物が光合成産物としてアミロプラスト(色素体の一種)内に蓄積するグルコースの多量体である。澱粉粒の形
状と大きさは植物種によって異なっている。その形状を決定する分子機構の解明を目指して研究を進めている。これまでに、突然変異体の解析から澱粉粒の大きさを制御する遺伝子である SSG4 遺伝子ならびに SSG6 遺伝子をイネで同定した。
今年度は、澱粉粒の形状に関する新規の突然変異体を単離するために、イネとオオムギを用いて新しくスクリーニングを
開始した。

-1-

4. Molecular mechanism underlying the diversity of starchgrain morphologies among plant species
Starch is a biologically and commercially importantpolymer of glucose and is synthesized to form starch grains(SGs) inside the plastids (amyloplasts). Despite the simple
composition of glucose polymer, SG exhibits various
morphologies and sizes depending on plant species.
However, the molecular mechanisms underlying this SG
diversity remain unknown. To answer this question, we are
now screening and analyzing rice and barley mutants
related to SG morphology and size.

環境応答機構研究グループ

Group of Environmental Response Systems
Our research aim is to understand the molecular systemof the response to abiotic stress in plants at the levels fromgene expression to individual behavior. We are mainlyinterested in plant hormone response systems and we havebeen analyzing the systems using physiological, molecularbiological and molecular genetic approaches. Our mainachievements in 2017 are described below.

本グループでは、植物の非生物的ストレスに対する応答について、遺伝子レベルから個体レベルまで、広くシステムを理解することを目指して研究を行っている。特に、植物ホル
モン応答機構に着目し、生理学、分子生物学、分子遺伝学的手法により解析を行っている。今年度の研究成果の一部は以下の通りである。
１．ABA応答に関わる因子、細胞機能に関する研究
環境応答に関わる植物ホルモンのアブシジン酸（ABA）の作用機作を理解するためにシロイヌナズナを用いて分子遺伝学的解析を行っている。これ迄に、ミトコンドリア機能異常がアブシジン酸やサリチル酸応答に異常をもたらすことを明らかにした。また、新奇短鎖ペプチドFEP1がミトコンドリア
機能低下状況での鉄欠乏応答を誘導していることを示唆する結果を得ていた。本年度は、FEP1がこれまでに明らかにされてきた鉄欠乏応答機構より更に上流で機能する新奇因子であることを明らかにした。また、ゼニゴケのAHG2類似遺伝子の解析を進め、これがシロイヌナズナのahg2-1変異を相補することを明らかにした。

1. Analysis of components involved in the ABA response
To understand the ABA response mechanisms, we havebeen studying ABA-related mutants of Arabidopsis, andshowed that mitochondrial defects cause abnormal
responses to ABA and salicylic acid in Arabidopsis. We
found that a novel short peptide named FEP1 is involvedin the abnormal iron deficiency response in a mitochondrial
defective mutant. This year, we showed that FEP1 has apivotal function in the iron-deficiency response in
Arabidopsis. Remarkably, we found that FEP1 regulates
the gene expression upstream of the known iron-deficiency
responses that are regulated by FIT. Last year we
identified the liverwort counterparts of AHG2 and AGS1,
and this year, we analyzed them in detail. For example, we
showed that MpAHG2 complements the Arabidopsis
ahg2-1 mutant, confirming the wide conservation of the
AHG2-AGS1 system in plants.

２．圃場オオムギの生長解析
植物の表現型を制御する遺伝的要因と環境要因の相互作用を明らかにする方法を確立することを目的として、圃場オオ
ムギの生長をモニターする解析基盤の構築をすすめた。実験
圃場の８系統のオオムギから毎週、葉のサンプルを取得しRNAseqおよびホルモノーム解析を行うプラットフォームを確立した。また、圃場オオムギの生長過程の形態的変動を捉える画像解析技術の確立を目指し、画像取得方法の確立、教師データの取得を行った。これらの研究は、理化学研究所、
横浜市立大学、名古屋工業大学との共同研究で進めている。

2. Establishing the phenomics of field barley
To understand the gene x environment interaction in thefield crops, we attempted to establish the phenomics
platform to monitor the growth states and physiologicalfluctuations of the field barley throughout its life-cycle. This
year we established an experimental system to analyze
RNAseq and hormonome in weekly sampled barley leaves(8 lines, n=3). In addition, to obtain morphologicalphenotype information of field barley, we established animage capturing system for field barley. Using this system,
we obtained images of barley grown indoors for machinelearning to detect barley plant images and obtain
information to determine the growth states.

３．亜硫酸による気孔閉口機構の解析
気孔閉口は有害ガスから植物が身を守るための機構のひとつであると考えられている。これまでにオゾン誘導性気孔閉
口の分子機構はよく研究されてきたが、亜硫酸による気孔閉
口機構はよくわかっていなかった。本研究では亜硫酸ガスがアポプラスト液に溶解した際に生成される３種の水溶性化合物種のうち気孔閉口を誘導する化合物種を同定した。さらに
オゾン誘導性気孔閉口能を欠損した突然変異体の解析から、有害ガスの中でもオゾン誘導気孔閉口と亜硫酸誘導気孔閉口の分子機構は異なることが示唆された。

3. Analysis of the mechanism of sulfur dioxide-induced
stomatal closure
Closing stomata is one of the protection mechanisms ofplants against hazardous gasses. The molecularmechanism of ozone-induced stomatal closure has beenstudied well. However, the mechanism of sulfur
dioxide-induced stomatal closure has not been elucidated.
This year, we identified the responsible chemical species
that induces stomatal closure among aqueous chemical
species formed when sulfur dioxide dissolved in theapoplastic fluid. We also analyzed the response of severalozone insensitive mutants, suggesting that the molecularmechanism of sulfur dioxide-induced stomatal closure isdistinct from that of ozone-induced stomatal closure.

４．トランスポゾン関連ドメインを持つ新規サイレンシング
因子の同定
転写型遺伝子サイレンシングはエピジェネティックな機構によって遺伝子やトランスポゾンの発現を抑制する現象である。我々は、シロイヌナズナを用いて、トランスポゾン関連
ドメイン（PMD）を持つタンパク質が転写型遺伝子サイレン
シングに関与することを明らかにした。さらに、これらの因子はDNAメチル化や小分子RNAとは独立の経路でクロマチンの凝縮に関与すること、PMDドメインは植物進化の過程でトランスポゾンに取り込まれてゲノム上に広がり、その後サイレンシング能を獲得したことが示唆された。

4. Identification of Arabidopsis protein with a transposonrelated domain involved in gene silencing
Transcriptional gene silencing (TGS) is a phenomenon
that represses gene and transposon expression by
epigenetic mechanisms including DNA methylation andsmall interfering RNAs (siRNA). We found that the
KUN/MAIL1 gene defines an alternative silencing
pathway independent of DNA methylation and siRNAs in
Arabidopsis. Mutations in KUN/MAIL1 lead to release ofsilencing and impaired condensation of pericentromericheterochromatin. Interestingly, the KUN/MAIL1 protein
encodes a transposon-related domain, and this suggeststhat a genic version of a TE-related domain was used inplant evolution to enforce silencing.

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(Soil Stress Unit)

土壌環境ストレスユニット

Group of Plant Stress Physiology

植物ストレス学グループ
本グループでは植物の必須元素、有益元素及び有害元素の吸収・集積機構、ミネラルストレスに対する植物の応答反応や耐性機構について個体レベルから遺伝子レベルまで研究を行っている。今年度の研究成果の一部は以下の通りである。
１．イネの節における新規リン酸輸送体の同定
イ ネ の 節 で 高 発 現 す る SPDT(Sultr-like Phosphate
Distribution Transporter)遺伝子について解析した結果、SPDT は、節の肥大維管束および分散維管束の両方で木部に発現し、細胞膜局在型リン酸輸送体をコードすることが分かった。この遺伝子を破壊すると、穀粒へのリンの分配は減少
したが、藁への分配は増加した。その結果、変異体の玄米中のリンおよびフィチン酸の濃度は 20～30％低下した。しかし、収量、種子の発芽率、および初期の生育への影響は認められなかった。SPDT がリンを穀粒へ選択的に配分するスイッチとしてイネの節で機能することを示している。
２．イネの塩耐性に重要なマグネシウム輸送体 OsMGT1 の同定
イネのマグネシウム輸送体 OsMGT1 が耐塩性の調節に重要であることを明らかにした。OsMGT1 遺伝子は根で塩スト
レスによって誘導された。またこの遺伝子を破壊すると、イ
ネの耐塩性が大きく低下した。マグネシウムはイネの耐塩性に関わる主要な輸送体OsHKT1;5の輸送活性を高めることを明らかにした。したがって、OsMGT1 は OsHKT1;5 の輸送活性を調節することによって、イネの耐塩性の向上に寄与する。
３．ソバのアルミニウム耐性遺伝子の解析
ソバのアルミニウム耐性に関わる遺伝子 FeALS1.1 、
FeALS1.2 と FeMATE1、FeMATE2 の機能解析を行った。
FeALS1.1 と FeALS1.2 とも液胞膜に局在していた。また
FeALS1.1 の発現がアルミニウムによって誘導されたのに対して、FeALS1.2 はアルミニウムによって誘導されなかった。
両遺伝子ともシロイヌナズナの変異体 atals1 のアルミニウム
耐性を回復させた。これらの結果は、FeALS1.1 と FeALS1.2
はアルミニウムを根や葉の細胞の液胞に隔離することに機能していることを示している。
また FeALS1.1 と FeALS1.2 の発現量はシロイヌナズナでの相同遺伝子 AtALS1 より高く、この高発現量がソバの高いアルミニウム耐性に寄与していることを示した。
一方、FeMATE1 と FeMATE2 は共にクエン酸の輸送活性を示したが、FeMATE1 が細胞膜に局在していたのに対して、
FeMATE2 はゴルジとトランスゴルジに局在していた。また
FeMATE1 の発現は根でアルミニウムに誘導されたが、FeMATE2 は根と葉の両方で誘導された。FeMATE1 とFeMATE2 は共にシロイヌナズナ変異体 atmate1 のアルミニ
ウム耐性を相補したが、FeMATE1 のみクエン酸の分泌を相補した。これらの結果は FeMATE1 と FeMATE2 がソバのア
ルミニウム耐性において異なる役割を果していることを示唆している。

Our group has been analyzing the mechanisms of uptake
and accumulation of essential, beneficial and toxic mineralelements, and the mechanisms of the response andtolerance of plants to mineral stresses at different levels
from intact plants to genes. Our main achievements in2017 are described below.
1. Identification of a novel phosphorus transporter in rice
We functionally characterized a gene expressed in thenode, SPDT (Sultr-like Phosphate Distribution
Transporter) in rice. SPDT was expressed in the xylem
region of both enlarged and diffuse vascular bundles of thenodes.
It encodes a plasma membrane-localized
transporter for phosphorus. Knockout of this gene
resulted in decreased distribution of phosphorus to thegrain, but increased distribution to the straw. As a result,the concentration of inorganic P and phytate in the brownrice was decreased by 20-30% in the mutants. However,there was no effect on the grain yield, germination andearly growth. These results indicate that SPDT functions
as a switch for preferential distribution of phosphorus to
the grains.
2. Role of OsMGT1 in salt-stress tolerance in rice
We found that magnesium transporter OsMGT1 plays acrucial role in salt-stress tolerance in rice. The expression of
OsMGT1 in the roots was up-regulated by salt stress.
Knockout of OsMGT1 resulted in decreased tolerance tosalt stress. We also found that the transport activity of
OsHKT1;5, a key transporter for salt stress tolerance, wasenhanced by magnesium.
Therefore, OsMGT1contributed to salt stress tolerance by enhancing
OsHKT1;5 transport activity in rice.
3. Functional characterization of genes related to Al
tolerance in buckwheat
We functionally characterized four genes; FeALS1.1,
FeALS1.2, FeMATE1 and FeMATE2, which were
implicated in Al tolerance in buckwheat. Both FeALS1.1
and FeALS1.2 were localized to the tonoplast. The
expression of FeALS1.1 was up-regulated by Al, but that of
FeALS1.2 was not. Both genes complemented Al toleranceof Arabidopsis mutant atals1. These results indicate that
FeALS1.1 and FeALS1.2 are involved in Al tolerance by
sequestering Al into the vacuoles of the roots and leaves.
Furthermore, we found that the expression level of
FeALS1.1 and FeALS1.2 in buckwheat was much higher
than their homologous gene AtALS1 in Arabidopsis.
On the other hand, although both FeMATE1 and
FeMATE2 showed transport activity for citrate, FeMATE1
was mainly localized to the plasma membrane, whereas
FeMATE2 was localized to trans-Golgi and Golgi. The
expression of FeMATE1 was only induced in the roots by
Al, but that of FeMATE2 was up-regulated in both theroots and leaves. Both FeMATE1 and FeMATE2 wereable to complement the Al sensitive phenotype of
Arabidopsis mutant atmate1, but only FeMATE1 was able
to complement the citrate secretion. These results
indicate that FeMATE1 and FeMATE2 play different roles
in Al tolerance in buckwheat.
4. Analysis of cadmium accumulation in rice
We isolated a rice mutant which accumulated large
amounts of cadmium. We further found that OsHMA3
was responsible for the phenotype. This mutant has apotential for phytoremediation of Cd-contaminated soil.
We also dissected the mechanism involved in
Si-decreased accumulation of Cd in rice. We found that Si
is not able to alleviate Cd toxicity. However, Si is able todown-regulate the expression of OsNramp5 and OsHMA2,
which are involved in Cd uptake and root-to-shoottranslocation, resulting in Cd accumulation in rice shoots.

４．イネのカドミウム集積機構の解析
イネのカドミウム高集積変異体 TCM213 を単離した。またその原因遺伝子が OsHMA3 であることを突き止めた。さらに、この変異体のカドミウム汚染土壌の修復(phytoremediation)への可能性を示した。ケイ素によるカドミ
ウム集積の軽減のメカニズムをも明らかにした。ケイ素は直接的にカドミウム毒性を軽減する効果はなかったが、ケイ素
がカドミウム吸収に関わる輸送体遺伝子 OsNramp5 と転流に関わる輸送体遺伝子 OsHMA2 の発現を低下させることによって、カドミウムの集積を減少させることを明らかにした。

-3-

Group of Plant Molecular Physiology

植物分子生理学グループ
本グループは（旧）植物成長制御グループと（旧）分子生
理機能解析グループが合同して 4 月に発足した。本グループ
では植物細胞の環境ストレス応答機構を分子、細胞、生理学的に研究している。塩ストレス環境下でのイオン輸送については 1 価陽イオン輸送体、低分子化合物の輸送についてはア
クアポリンの研究を進めている。さらに、酸性土壌において植物の生育を阻害するアルミニウム（Al）イオンについて研究を行っている。Al 毒性機構については、液胞が関与する細胞死誘発機構や活性酸素ストレス、糖代謝機構の関与について解析している。Al 耐性機構については、コムギの Al 耐性遺伝子である Al 活性化型リンゴ酸輸送体遺伝子 ALMT の機能と構造解析、そして植物に特異的な ALMT ファミリーの機能多様性を解析している。本年度の研究成果は次の通りである。
１．二酸化炭素輸送性アクアポリン OsTIP2;2
これまでに酵母スクリーニング系を用いてイネのアクアポ
リン OsTIP2;2 が二酸化炭素透過性を持つことを示した。今年度は OsTIP2;2 過剰発現イネの光合成活性を測定した。その A/Ci カーブの解析から、過剰発現体では光合成活性が野生型に比べて 1.45 倍有意に上昇していることが確認され、OsTIP2;2 は、イネの細胞内で光合成に必要な二酸化炭素を輸送している可能性が高いことが示された。

Two previous groups (“Plant Growth Regulation” and“Molecular and Functional Plant Biology”) combined toform the present group this April. Our research has been
focused on molecular, cellular and physiologicalmechanisms of plant stress responses. We studied
transporters for monovalent cations in salt stress, andaquaporins for the transport of low-molecular weightcompounds. We also focused on aluminum (Al) ion, a major
inhibitory factor of plant root growth in acid soils. We
mainly investigated the mechanisms of Al toxicity andtolerance in plants. We are now analyzing vacuole-involved
cell death, reactive-oxygen-species stress and sugar
metabolism in Al toxicity. Furthermore, the functional andstructural properties of the Al-activated malate transporter
gene ALMT, a major Al tolerance gene in wheat, andfunctional diversity of ALMT family have been studied.
Research outlines of this year are as follows:
1. OsTIP2;2 promoting CO2 transport
Rice OsTIP2;2 aquaporin was identified as a putative
CO2 transporter using a yeast screening system. This year
we measured the photosynthetic activity of rice plants
overexpressing OsTIP2;2. Analysis of the A/Ci curve
indicated that this over-expresser has 1.45-hold-enhanced
photosynthetic activity than wild-type. This suggests that
OsTIP2;2 transports CO2 that is required forphotosynthesis in rice cells.

２．細胞にナトリウムイオンが流入する経路としてのイオン輸送系
塩ストレス初期応答においてナトリウムイオンが細胞内に流 入 す る 経 路 と し て 、 PIP ア ク ア ポ リ ン お よ びcyclic-nucleotide-gated cation channels (CNGC)についてアフ
リカツメガエル卵母細胞を使った電気生理学的測定系で解析を進めた。その結果、オオムギの PIP2 型アクアポリン分子種のうち HvPIP2;1 と HvPIP2;8 の 2 つの分子種がイオン透過性を持つことが示された。またオオムギ HvCNGC2-3 は外液にナトリウムとカリウムの両イオンが共存するときのみ、ナトリウムによると考えられる内向きのイオン電流が観察されたが、リチウム、ルビジウム、セシウムといった 1 価陽イオ
ンはナトリウムおよびカリウムの代替はできないことが示された。

2. Ion transport systems as the Na+-influx path
As possible Na+-influx paths into cells in the initial phaseof salinity stress, we investigated PIP aquaporins andcyclic-nucleotide-gated cation channels (CNGC) using aheterologous expression system of a frog Xenopus oocyte
and the electrophysiological measurement system. We
detected ion permeability in HvPIP2;1 and HvPIP2;8
among barley PIP2-type aquaporins. As for barley
HvCNGC2-3, we detected putative Na+-inward currents
only in the presence of external both Na+ and K+. Other
monovalent cations (Li+, Rb+, Cs+) could not replace thisfunction of Na+ and K+.

３．トマトの果実発現 SlALMT ファミリーの生理機能
トマトには 16 の ALMT ファミリー遺伝子が存在する。これまでに、果実で特に多く発現する 2 つの SlALMT4,SlALMT5 が果実熟成過程で継続的に、そして未熟種子につながる維管束で発現する事を明らかにした。そして、SlALMT5が種子の有機酸含量を調節する事も明らかにした。本年度、果実で発現するもう一つの SlALMT 遺伝子について解析した。
その発現は熟成が進む事で減少し、また、果実の維管束で発現していた。さらに、電気生理学的測定により、他の 2 つよりも高いリンゴ酸輸送能を示す事が解った。現在、果実と種子の有機酸含量の調査のため、この SlALMT 遺伝子の高発現と発現抑制体の作製を進めている。

-4-

3. Physiological function of SlALMT-family malatetransporters in tomato fruit
We have investigated sixteen ALMT genes in tomato,
and already identified two genes, SlALMT4 and SlALMT5,
which were expressed in fruit throughout development,
and in the vascular bundles connected to the seed in fruit.
The transport activity of SlALMT5 during fruit
development alters the organic acid contents of tomato
seeds. This year, we also identified one more SlALMT gene
expressed in the vascular bundles at the early stage of fruit
development. Electrophysiological analysis showed that
this SlALMT possesses the highest function for malate
efflux than SlALMT4 and SlALMT5. To assess the organic
anion contents of the fruit and seed, we are now developing
transgenic tomato for the gene over-expression or
suppression.

環境生物ストレスユニット(Biotic Stress Unit)

植物・微生物相互作用グループ

Group of Plant-Microbe Interactions

植物の生育は、病原微生物あるいは共生微生物との相互作用により大きく影響を受ける。本グループでは、いくつかの系でそれらの相互作用を分子、細胞、個体レベルで解析している。以下に本年の成果を記す。

Plant growth is influenced by various microorganisms
including mutualistic and pathogenic ones. Our groupexplores, at molecular, cellular and individual levels, theinterplay of mutualistic and pathogenic microorganisms
occurring in some selected plant/microorganism systems.

１．
植物病原糸状菌の抗ウイルス RNA サイレンシングの転写制御
ウイルス／植物病原性糸状菌宿主間の相互作用は多様である。あるウイルスは宿主菌の病原性を衰退させ、また、別のウイルスは無病徴感染する。一方、真核生物である植物病原
糸状菌は２つの抗ウイルス防御機構を有する。一つは、菌類の細胞レベルで機能する RNAi であり、もう一つは集団レベ
ルで機能する菌糸融合不和合性である。モデル糸状菌である
クリ胴枯病菌では、ある種のウイルスの感染により RNAi 鍵
因子（Dicer、Argonaute 遺伝子）の転写レベルでの亢進（ウイルス防御反応）が認められる。一方、ウイルス側にはその亢進を抑制する RNAi サプレッサーがコードされる（ウイルスによる反撃）。今年は、ウイルス感染に応答性 RNAi 因子の転写亢進に関与する SAGA 複合体（転写コアクティベーター）の同定に成功した。動物、植物に次ぐ第 3 極としての菌類のウイルス研究の重要性・魅力がまた一つ明らかになった。

1. Transcriptional up-regulation of antiviral RNA silencing
in a phytopathogenic filamentous fungus
Interactions between viruses and plant pathogenic
filamentous fungal hosts are diverse. RNAi-mediatedantiviral defense is well conserved in the fungal hosts as inother eukaryotic organisms. Although several RNAi key
genes are transcriptionally up-regulated upon virus
infection in many hosts, little is known about the induction
mechanism. Here, we developed a screening method for
identification of the genes mediating robust transcriptional
up-regulation upon infection by RNA viruses of thedicer-like 2 (dcl2) gene of an ascomycetous phytopathogen,chestnut blight fungus. We show that two enzymatic
activities of histone acetyltransferase and histone
deubiquitinase of the universally conserved SAGA
(Spt–Ada–Gcn5 acetyltransferase) complex differentiallyregulate the transcriptional induction of two main antiviral
RNA silencing components, dcl2 and argonaute-like 2(agl2). A virus-specific pattern requirement of AGL2 and
DCL2 as positive feedback players for this transcriptional
induction is also noted.

２．分節型ラブドウイルスに見いだされたゲノムリアソート
メント
ランえそ斑紋ウイルス(OFV)は２分節型ゲノムを持つユニークなラブドウイルスである。我々は、本邦のラン科植物に
塩基配列レベルで異なる二つの OFV 系統群（世界的に分布し、アジアでは未報告であったサブグループ I と日本において広く分布するサブグループ II）の発生を確認した。さらに、OFV
サブグループ間における分子系統析および組換え解析を進めた結果、未知のウイルス系統を含むサブグループ間でゲノム分節のリアソートメント（再集合）が生じたことが示唆された。このことは、分節型ラブドウイルスの遺伝的多様性にゲ
ノムリアソートメントが貢献したことを示している。
３．植物共生メタノール資化性菌の機能解析
植物の表面には植物の気孔から放出されるメタノールを資化する Methylobacterium 属細菌が多く存在する。本属細菌には植物の生育促進作用があることが知られているが、その分
子メカニズムはよく分かっていない。またメタノールを酸化するメタノール脱水素酵素をコードする遺伝子は複数存在し、そのうちの一つがランタノイド元素に依存する酵素であることを見いだしており、カルシウム依存型の酵素との切り替え機構を解析している。また本属細菌においてエルゴチオネイ
ンという抗酸化アミノ酸が高蓄積し太陽光や温度変化など植物上での生育時に重要なストレス耐性に関わっていることを明らかにした。

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2. A possible occurrence of genome reassortment among
bipartite rhabdoviruses
Orchid fleck virus (OFV) is a rhabdovirus with a uniquebipartite genome. We have determined that several OFV
isolates derived from orchids in Japan belong to two
genetically distant subgroups: subgroup I, members ofwhich are distributed worldwide but previously not knownin Asia, and subgroup II, which is commonly distributed inJapan. Based on phylogenetic and recombination analyses,a reassortment(s) of genome segments was predicted tooccur between OFV subgroups or unknown strains. Ourdata show that genome reassortment contributes to thegenetic diversities of the bipartite rhabdoviruses.
3. Function of methylotrophs symbiotic to plants
Methylobacterium species is one of the most
predominant bacterial species in the phyllosphere and theyutilize methanol emitted from plant stomata. They
promote plant growth but the mechanism remains unclear.
We identified multiple genes encoding methanol
dehydrogenases in the bacteria, one of which was found to
be a lanthanide-dependent enzyme. We are investigating
the switching mechanism between the gene expression of
the calcium-dependent enzyme and the lanthanidedependent enzyme. We also found that they accumulate anantioxidant amino acid, ergothioneine, which wasimportant for them to resist against phyllospheric stresses
including sunlight and temperature changes.

Group of Plant-Insect Interactions

植物・昆虫間相互作用グループ
本グループでは植物が外敵となる植食性昆虫との生存競争の中で、どのように植食性昆虫に対する防御システムを活性化するのか、その分子機構に注目し研究を行っている。今年度得られた成果の一部は以下の通りである。

Our group is focusing on the basic question of how plants
induce their defense systems to survive in the naturalcompetition with the herbivorous insects. We report the
progress in three major areas in 2017 as described below.

１．イネにおいて狭食性および広食性昆虫の食害により誘導される揮発性物質放出
様々な植食性昆虫がイネを食害した際に、昆虫種に応じた異なる応答を示すかどうかは不明な部分もある。食害時に植物が放出する揮発性物質（Volatile organic compounds,
VOCs）は、植食性昆虫に対する天敵の誘引に関わり、この機構は間接防御と呼ばれ広く知られている。本研究では、イネが狭食性のイチモンジセセリ（Parnara guttata）と広食性のク
サシロキヨトウ（Mythimna loreyi）を見分けて、寄生蜂や捕食者への特異的なシグナルとなり得る異なる特異的な VOCs
応答を示すかどうかを解析した。その結果、放出される揮発性物質の種類に違いは認められなかったが、狭食性昆虫により誘導される VOCs 量は広食性昆虫と比較して極めて少ない
ことが明らかになった。

1. Emissions of rice volatiles in response to specialist andgeneralist herbivore
Rice plants are exposed to many herbivores but it is notclear if these herbivores can induce differential responses
in rice; for instance, upon herbivore attack, all plants emit
volatile organic compounds (VOCs) that attract natural
enemies of herbivores (indirect defense response). We usedindirect defense to test if specialist (Parnara guttata) andgeneralist (Mythimna loreyi) rice herbivores can be
distinguished by rice plants, leading to different VOC types,
and thus specific signals for parasitoid wasps andpredators. We found that, although volatiles were notdifferent in between the two, specialist caterpillars
provoked significantly less VOCs compared to generalist.
We propose that emitting less VOCs could be an
adaptation mechanism of P. guttata larvae to thrive on rice
plants through the more efficient escape from parasitoids
and predators.

２．食害時の昆虫・植物由来エリシターシグナル間の相互作用に関する新たな知見
植物は植食性昆虫由来の特異的なエリシターを介して植食性昆虫を認識し、強固な防御応答を誘導する。現在までに、イネを食害するクサシロキヨトウの認識において、FACs（Fatty acid amino acid conjugates）と高分子エリシターが関与することを報告しており、これらの同時処理により防御応
答が相乗的に増加したことから、複数エリシターシグナルの統合の重要性が示唆された。今年度は、傷害時に産生される
デンジャーペプチドと、昆虫吐き戻し液エリシターを組み合わせた際に誘導される防御応答を解析した。これまでにイネの 6 種の PROPEP 遺伝子産物を前駆体とするペプチドがエ
リシター活性を示すことを明らかにした。また、各 PROPEP
遺伝子がそれぞれ特異的な転写制御を受けること、デンジャーペプチドで活性化される細胞内シグナルが、吐き戻し液で活性化されるシグナルと相互作用することを明らかにした。
これらの結果から、食害時の植物-昆虫インターフェースにおける興味深いシグナルネットワークの存在が示唆された。

2. New insights into interplay between insect- and hostderived elicitors during herbivory
Plants use specific elicitors from insects to detectherbivores and mount strong defense responses. Previously,
we reported that herbivore like larvae of M. loreyi arerecognized through two types of elicitors, fatty acid aminoacid conjugates (FACs), and another type of high molecularweight elicitor. When both elicitors are combined, plant
defense is synergistically enhanced, suggesting that
integration of defense signaling pathways is important forplants. This year, we identified another type of synergy
between oral secretion-derived elicitors and danger
peptides, which are produced upon wounding in rice plants.
We report that danger peptides in rice include six PROPEP
genes, encoding precursors of corresponding peptides, all ofwhich had elicitor activity in cultured rice cells. In addition,
we found that some PROPEP genes show specificregulation at transcript level, and their peptides positively
interact with the OS-derived elicitors. Our results further
highlight intriguing signaling networks that exist at theinterface between insects and plants during herbivory.

３．ソルガムの耐虫性向上に向けた取り組み
光環境適応グループとの共同研究により、複数のソルガム（Sorghum bicolor）品種を用いて、害虫となるシンクイムシとアブラムシに注目し、耐虫性の高い品種の探索を昨年度より続けている。本年度はマケレレ大学（ウガンダ）の CyprianOsinde 訪問研究員と協力し、ソルガム組み換え自殖系統より
シンクイムシ抵抗性に関わる QTL 候補を検出した。
同時にア
フリカのソルガム品種を用いてアブラムシに対する抵抗性試
験を圃場にて行い、抵抗性の高い品種を見出した。そこでア
ブラムシ抵抗性遺伝子の同定などの遺伝的解析に向けて、得られた抵抗性品種の内の数種を用いて感受性品種との交配を試みている。

3. Tools for improvement of sorghum resistance to insects
In collaboration with the Plant Light Acclimation Group,
we examined natural diversity in sorghum (Sorghum
bicolor) associated with the high resistance to herbivores,
especially destructive insects like stem borers and aphids.
Together with a guest scientist Cyprian Osinde from
Makerere University in Uganda, we identified several
quantitative trait loci (QTLs) associated with the low stem
borer infestation in sorghum hybrids. At the same time, we
confirmed resistance of several African lines to aphids inthe field, which are now used for crosses with thesusceptible lines to conduct genetic analysis and identify
aphid resistance genes in this important crop.

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遺伝資源ユニット(Genetic Resources Unit)

ゲノム多様性グループ

Group of Genome Diversity
Our group has preserved ca. 14,000 accessions ofcultivated barley including experimental lines and ca. 900
accessions of wild relatives. The objectives of our researchare 1) collection, multiplication, preservation anddistribution of barley germplasm, 2) evaluation of genetic
diversity and development of the database of genotype andphenotype data, and 3) application of barley genetic
resources to breeding and basic research in the genome
analysis using new technologies, e.g., NGS, microarraygenotyping and genetic transformation.

ゲノム多様性グループでは、実験系統を含む栽培オオムギ
約 14,000 系統と野生オオムギ約 900 系統を保有し、(1) 種子の増殖、収集、保存および種子配布等の系統保存事業、(2) 遺伝的多様性の評価ならびに特性形質のデータベース化、(3)ゲノム解析の諸手法を用いたオオムギ遺伝資源の機能開発に関する研究に取り組んでいる。
１．オオムギ遺伝資源の系統保存事業
当グループは、ナショナルバイオリソースプロジェクト(NBRP)に参画し、オオムギ種子ならびにオオムギゲノムリソースの配布事業を担っている。
(a) 系統種子の配布と保存
当事業では、在来系統、実験系統および野生系統を含むオ
オムギ種子の増殖ならびに配布を行っている。ノルウェー・
スバルバル世界種子貯蔵庫へのオオムギ種子預託も進めている。これらのオオムギ種子は、未来の食糧確保のために必要な品種改良の基礎となる重要な遺伝資源であり、重複保存によって長期的な食糧安全を保証することに繋がる。
(b) ゲノムリソースの配布保有するゲノムリソースは，国内外の研究者のリクエストに応じて分譲している。これらのリソースは、国産の醸造用
オオムギ品種「はるな二条」の BAC ライブラリーの全クローンセット、選抜用プール DNA、高密度フィルターならびに完
全長 cDNA クローン等が含まれている。

1. Preservation and distribution of barley genetic resources
Our group has been participating in the National
BioResource Project (NBRP) and has been preserving anddistributing the barley seeds and DNA clones.
(a) Preservation and distribution of barley germplasms
We are multiplying and distributing the barley
germplasms including landraces, experimental lines andwild relatives. We are depositing barley seeds in the
Svalbard Global Seed Vault in Spitsbergen, Norway. Thesebarley seeds are important genetic resources to be utilized
as barley breeding materials for food security, and storageof duplicate samples is important.
(b) Distribution of barley genome resources
We are distributing the barley genome resources todomestic and international institutions and researchers
upon request. These resources include a complete bacterial
artificial chromosome (BAC) clone set, pooled BAC DNA forclone screening, its high-density replica membranes,
expressed sequence tag (EST) clone and full-length cDNA
derived from the Japanese cultivar “Haruna Nijo”.

２．オオムギ遺伝資源の評価
当グループでは、オオムギ遺伝資源を用いた有用形質の原因遺伝子単離と解析を進めている。穂発芽耐性の育種利用が期待されるオオムギの種子休眠性の遺伝機構の解明を目的とし、染色体組換置換系統(RCSL)に由来する大規模分離集団を用いて5HL染色体上のQTL (Qsd1)の原因遺伝子を同定した。
野生オオムギの種子休眠性 QTL の遺伝様式やその母性効果
や，
パンコムギの Qsd1 相同遺伝子の多様性を明らかにした．
３．オオムギのゲノム解析(a) オオムギのゲノム解析とマーカー開発
このプロジェクトでは、オオムギのゲノム解析基盤構築を進めている。これまでに、オオムギゲノムの物理地図、遺伝地図を統合し、全長 cDNA リソースを開発し、公表した。現
在、高速シークエンサーを用いた RNA-seq 解析を多数品種で実施し、多型解析を進めている。また，エキソーム・キャプ
チャーと QTL-seq とを組合せて，巨大ゲノムを持つ生物種における迅速マッピングの手法を開発した．
(b) オオムギの形質転換とゲノム編集
オオムギのポストゲノム研究の効率化を目的として、その形質転換効率に関わる遺伝子の探索を行っている。現在、安定して形質転換が可能な品種「Golden Promise」と形質転換が困難であるがゲノム情報が充実している品種「はるな二条」の交雑後代を用いて、遺伝的評価を行っている。また、育種や遺伝子機能解析への応用が期待されるオオムギのゲノム編集技術の開発を進めている。

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2. Evaluation of barley germplasm
Our group is focusing on isolation and characterization of
the genes involved in agronomically important traits usingbarley genetic resources. We have isolated a genecorresponding to barley seed dormancy QTL (Qsd1) on thelong arm of chromosome 5H, which may be associated withpre-harvest sprouting using a high-density linkage map of
a large segregating population from recombinant
chromosome substitution lines (RCSL). Our QTL analysis
using a wild barley accession harboring a strong grain
dormancy revealed novel insight into the genetic
mechanism regulating grain dormancy in barley.
Comparison analysis among sequences of wheat
orthologues in Qsd1 provided haplotype diversity among
sub-genomes and association underlying the phenotypic
differences in the seed dormancy.
3. Barley genome analysis(a) Genome analysis and marker development in barley
This project incorporated The International Barley
Sequencing Consortium (IBSC) to develop the barleyreference genome. We have published data on the
integration and ordering of physical and genetic maps, anddevelopment of full-length cDNA resources. Recently, we
performed RNA-seq analysis via NGS technology using
several barley varieties and conducted their single
nucleotide polymorphism (SNP) analysis. We also
developed new next generation sequencing (NGS)-based
gene/QTL mapping procedure in organisms with large
genomes, designated exome QTL-seq, combined withexome-capture sequencing and QTL-seq.
(b) Genetic transformation and genome editing in barley
For post-genome analysis, we are searching for the genes
related to the efficiency of transformation in barley. For
genetic analysis, we use the progenies derived from a crossbetween "Golden Promise", a variety that can betransformed, and "Haruna Nijo", a variety that is difficult
to transform. We are now developing a method ofmutagenesis by genome editing for future breeding andfunctional genomics in barley.

遺伝資源機能解析グループ

Group of Genetic Resources and Functions
Our group has been analyzing important genes
controlling morphogenesis and chemical compounds of
cereal crops, particularly barley (Hordeum vulgare L.). Our
main achievements in 2017 are described below.

本グループではオオムギを中心とするイネ科作物の形態や化学成分を制御する有用遺伝子の特定と機能解析を行っている。本年度の主要成果は以下の通りである。
１．イネ科作物の葉形態の遺伝制御

1. Genetic control of leaf morphology in cereal crops
Leaf morphology is critical for the survival of plant
species. The revelation of mechanisms that control
development in the leaf is quite important for plant
breeding. A variety of narrow leaf mutants have been
identified in the cereal crops of the world. Here, themolecular mechanisms underlying the narrow leaf
mutants are surveyed: (1) auxin‐related mutants, (2)cellulose synthase ‐like D ‐ related mutants, and (3)polarity‐related mutants. The results obtained from theseanalyses appear to be applicable to the breeding of major
cereal crops, and could contribute to increased foodproduction.

葉の形態は植物種の生存に重要な役割を果たすことから、葉の発生を制御する機構の解明は育種学的に重要課題と考えられる。世界的に重要なイネ科作物から多様な細葉変異体が特定されている。細葉になる機構を解明することでイネ科作物の葉形態制御機構を解明できると期待される。これまでに我々が解明した細葉変異体に他研究者の成果を加え、イネ科植物における細葉の分子機構をとりまとめた。イネ科における細葉変異体の原因遺伝子は、（１）オーキシン関連、（２）セルロース合成酵素様 D ファミリー、および（３）極性関連、に大別される。得られた結果は主要イネ科作物の改良に適用可能とみられ、食糧増産にも寄与すると期待される。
２． オオムギ属の防御関連二次代謝物
オオムギ属はゲノム構成により H, Xu, Xa, および I の 4 種類のクレードに分類される。オオムギ属の全てのクレードを含むように選定した代表種について防御関連二次代謝物を調査した。H クレードに含まれるオオムギはホルダチンを蓄積したもののベンゾキサチノンは持たなかった。H. bulbosumはホルダチンもベンゾキサチノンも産生しなかった。H クレードの一部の種はグラミンを産生した。I および Xa クレードの種はベンゾキサチノンを蓄積したものの、ホルダチンは持たなかった。H クレードの H. bulbosum および Xu クレードの H. murinum でこれまで未知の２種類の化合物が検出された。立体構造解析により、それらはこれまでに報告のない新規物質であることが判明し、ムリナミド A および B と命名した。これらの新規化合物は Bipolaris sorokiniana およびFusarium asiaticum に対して抗菌性を示した。ホルダチンはム
リナミドA およびB と化学構造的に類似の化合物の一群であると考えられることから、H およぶ Xu クレードに属するオ
オムギ属の種は類縁の化合物を共通して蓄積するとみられる。
今回分析した防御関連二次代謝物の構成からみて、オオムギ
属の進化の過程でH/Xu クレードの種がI/Xa 種から枝分かれし、それ以降に H/Xu クレードに属する種が新たな防御二次代謝物を獲得したと推察される。

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2. Metabolites specialized in defense in the genus Hordeum
Hordeum species are classified into four clades, H, Xu,
Xa, and I. The presence or absence of metabolites
specialized in defense was analyzed in representative
Hordeum species that included all four clades. In the H
clade, Hordeum vulgare accumulated hordatines but not
benzoxazinones, whereas H. bulbosum accumulated
neither compound. Some accessions in the H clade
accumulated gramine. Species in the clades I and Xa
accumulated benzoxazinones but not hordatines. In H.
murinum, a Xu clade species, neither hordatines nor
benzoxazinones were detected. Two hitherto undescribedcompounds were found to commonly accumulate in H.
bulbosum in the H clade and H. murinum in the Xu clade.
On the basis of spectroscopic analyses, they were identified
as dehydrodimers of feruloylagmatine and were designatedas murinamides A and B. Radical coupling reactions withferuloylagmatine as a substrate by peroxidase afforded
murinamides A and B. These compounds showed
antifungal activities against Bipolaris sorokiniana andFusarium asiaticum, indicating their defensive roles.
Because hordatines are also dehydrodimers ofhydroxycinnamic acid amides (HCAAs) of agmatine, boththe H and Xu clade species are considered to accumulate
the same class of compounds. Thus, when the H/Xu clades
split from the I/Xa clades during evolution, the defensive
metabolites shifted from benzoxazinones to dehydrodimersof agmatine HCAAs plus gramine in the H/Xu clades.

Group of Wild Plant Science

野生植物グループ

Our group has been investigating the mechanistic basis
for evolution of diversity of plant species. In addition, weare preserving resources of wild plant seeds. Our mainachievements during 2017 are described below.

本グループでは、地球上に植物の多様性が進化した仕組みの理解を目指した研究を行っている。また、併せてこれまでに収集された野生植物の遺伝資源を保存している。今年度の研究成果の一部は以下の通りである。
１．緯度に応じて異なる環境に対する植物の適応機構の解明を目指した研究
日長や気温をはじめとする緯度に応じて変化する環境は植物の生育に大きな影響を与える。こうした環境への適応の仕組みを理解するため、広範囲の緯度に分布する周北極-高山植
物を材料に、赤色光受容体フィトクロムに注目した研究を進めている。フィトクロムに注目する理由は、フィトクロムは全ての植物が持つ光受容体であるため、植物に普遍的に当てはまる仕組みを見出すことにつながる可能性があり、幅広い
応用への展開が期待されるからである。また、これまでの我々の研究から、異なる緯度に生育する植物（個体）は異なるフィトクロムの対立遺伝子を持つだけでなく、それらが自然選
択により分化していることが明らかにされているからである。
本年度は、シロイヌナズナの phyB 欠損株にアブラナ科ミヤマ タ ネ ツ ケ バ ナ 類 （ Cardamine nipponica-Carcamine

bellidifolia）の PHYB 遺伝子を形質転換させた植物を用いた生理学実験を行った。実生における表現型の違いから、

CnPHYB と CbPHYB では CbPHYB の方が活性型フィトク
ロムとしての安定性をより長時間維持することができることが明らかとなった。また、安定性の違いは異なる温度に対する生理活性の違いをもたらすことが明らかになった。

1. Unraveling mechanisms of adaptation to the local
environment that changes with the latitude
Adaptation to the environment which changes with thelatitude such as photoperiod and temperature is importantfor plants. As mechanisms of such adaptation, we arefocusing on the red-light photoreceptors called
phytochromes, and unraveling the functional differencesamong local accessions using arctic-alpine plants. There
are two reasons we focused on the phytochromes. Given
that all plants have phytochromes, knowledge of theiradaptive functions could be applied to various crops. In
addition, we previously found that plants growing atdifferent latitudes have alleles that diverged under natural
selection. This year, we examined the physiological roles of
PHYB from Cardamine bellidifolia (CbPHYB) andCardamine nipponica (CnPHYB) by complementing
mutants of Arabidopsis thaliana lacking functional PHYB.
Based on the phenotypes of the seedlings, we found thatCnPHYB and CbPHYB differ in stability of active state;that is, CbPHYB showed physiological activity longer than
CnPHYB. In addition, we demonstrated that thisdifference in physiological activity was correlated with thephysiological activity of the phytochrome at different
temperatures.
2. Some characteristic collections in the herbarium
The herbarium of IPSR preserves more than 70,000
plant specimens. They were collected since the founding of
the institute "Ohara Nougyou Kenkyu-syo", thepredecessor of IPSR. The features of the older collection
were examined by focusing on its collectors, collected date,taxa, and sampling localities.
Among ca. 60,000 specimens from Japan, ca. 32,000
were from Okayama, and ca. 12,000 from Ryukyu, Bonin,and Hokkaido (distant regions from IPSR). Among thespecimens from overseas, ca. 4800 were from Korea.
About half of the specimens were collected by the staffs of
our institute including the first director Dr. Kondo, the 2nd
director Dr. Nishikado (in his youth), Dr. Kasahara, and soon. Dr. Kasahara, the pioneer of weed science in Japan,
collected not only weeds but also other herbs or woody
plants. These collections are unique to IPSR. The
herbarium is open to research, but the old collection is notwidely known to outsiders. We introduced some of thefeatures of the herbarium at an international conference.

２．植物標本庫の特色あるコレクションの調査
当研究所の植物標本庫には、研究所創立以来収集された腊
葉標本が保存されている。これらを採集年代、採集者、分類
群、採集地などに基づいて類別することによって、標本庫の特色を調査した。約 7 万点の標本のうち、研究所職員による標本が約半数を占め、その中には初代所長近藤萬太郎、同時期職員の三宅千秋、二代所長西門義一、我が国の雑草学を確立した笠原安夫が採集した標本などが含まれる。笠原によるコレクションは国内外の雑草種を中心としながらも、絶滅危
惧種や森林の樹木なども数多く含まれる。これら所員による腊葉標本は、これまでその存在が外部に殆ど知られていないが、当研究所に固有の研究資料である。また、世界的な採集家などによって採集された国内希少種のコレクションも存在する。これら調査結果の一部を国際学会で発表した。

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ゲノム育種ユニット(Applied Genomics Unit)

核機能分子解析グループ

Group of Nuclear Genomics

本研究グループでは、植物を材料として、核および染色体の構造と機能に関する分子細胞遺伝学的研究を行っている。
染色体の機能要素のうち動原体を主な研究対象として、それらに関する基礎研究およびそれらを利用した応用研究を展開している。今年度の研究成果は以下の通りである。
１．動原体機能改変による半数体誘導系統の作出「半数体作出とその倍加」による半数体育種法では、１世代で純系を作成することが可能となり、純系の作出期間を大幅に短縮することができる。しかし、これまで半数体は花粉培養や異種交配により作出され、これらの方法を利用できる
種はごく僅かであった。そこで、本研究では動原体の機能低下を利用した普遍的かつ効率的な半数体誘導系統の作出系の開発を行っている。具体的には、（１）真核生物に普遍的に存在する動原体タンパク質をゲノム編集により改変して、その機能を低下させる、（２）この機能低下した動原体をもつ配偶子と正常な動原体をもつ配偶子を交配することにより、受精胚中で選択的に片親由来の染色体セットを脱落させ、半数体を作出する。今年度は、シロイヌナズナ、イネ、トマト、ミ
ヤコグサにおいて、動原体に部分的な機能不全を引き起こす
改変動原体タンパク質を発現するコンストラクトを導入した
後に、内在の同遺伝子のゲノム編集による破壊を試みた。その結果、イネとシロイヌナズナにおいて、内在の遺伝子に欠損をヘテロに持つ系統が得られた。現在これらの系統から欠失ホモ系統を作出している。この試みに加えて、シロイヌナ
ズナでは、機能不全コンストラクトの過剰発現により、動原体タンパク質プール中の野生型タンパク質の割合を低下させることによる半数体誘導系統の作出も試みている。
２．透明化技術を用いた植物組織内におけるエピジェネティ

We have been conducting molecular cytogenetic studies
on the structure and function of nuclei and chromosomes
using plant species. Kinetochores have been our main
research subjects among functional chromosomal elements.
We have been conducting basic research on the
kinetochores and applied research utilizing them. Our
main achievements in 2017 are described below.
1. Construction of haploid-inducer lines by alteration ofcentromere function
Using doubled-haploid breeding methods by "haploid
production and its doubling", it is possible to create purelines in one generation, and to dramatically shorten
production period of pure lines. However, so far haploids
have been produced by pollen cultivation or crossbreeding,and only a few species can be produced by these methods.
Therefore, in this study, we are developing a system forproducing universal and efficient haploid-inducer lines by
declining the function of kinetochores. The following two
steps are involved in the haploid production: (1)modification of essential kinetochore proteins bytransformation and genome editing to reduce theirfunctions, (2) selective chromosome eliminations in
fertilized embryos by mating gametes with this modified
kinetochore and gametes with normal kinetochore. This
year, we tried destroying the endogenous kinetochore
protein genes of the Arabidopsis thaliana, rice, tomato and
Lotus japonicus by genome editing after introducing a
construct expressing the protein causing partial function in
their kinetochores. As a result, in rice and A.thaliana,
heterozygous strains defective of endogenous genes wereobtained. Currently, we are trying to isolate homozygouslines from the lines. In addition to this attempt, we havebeen trying to produce haploid-inducer lines by decreasing
the proportion of wild-type protein in the kinetochore
protein pool with overexpression of dysfunctional
constructs in A. thaliana.

ック修飾の解析
これまで、エピジェネティック修飾はクロマチン免疫沈降法により解析されてきた。この方法は、1 kb 以下の高解像度をもつ反面、原理上、多くの細胞の混合物を実験材料とする
ため、組織内の個々の細胞のエピジェネティック修飾情報を解析することはできない。これらの細胞は個別に制御されているはずであり、これらの情報を得ることは植物の環境応答制御システムを理解するために不可欠である。本年度は、我々が開発した簡便な植物組織内免疫染色法である「ePro-ClearSee 法」を用いて、細胞内の個々の細胞でエピジェネティック修飾とともに DNA を可視化する方法について検討した。

2. Analysis of epigenetic modifications in plant tissues
using a clearing method
Epigenetic modification has been analyzed by chromatin
immunoprecipitation. Although this method has a highresolution of about 1 kb or less, epigenetic modification
information of individual cells in the tissue cannot beanalyzed because, in principle, a mixture of many cells areused as experimental materials in this method. These cells
should be individually controlled, and obtaining theseinformation is indispensable for understanding
environmental response control system in the plant. This
year, we examined a method to visualize DNA together
with epigenetic modification in individual cells using the"ePro-ClearSee method" which is a simple in-situ
immunostaining method developed by us.

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Group of Genome Regulation

ゲノム制御グループ
本グループでは、効率的な食糧生産あるいは種子品質向上のために必要な遺伝要因の解明や、金属や酸化ストレスある
いは宇宙環境等で生育可能な植物の耐性遺伝子の解明を目的とする。

This group analyzed the genetic factors for greater
production of crops and improvement of seed quality andalso tolerance genes for metal or oxidation stresses and thespace-growing.

１．バスマティイネと pLIA-4d との交雑 F2 での収量形質に関する QTL 解析
アフリカ在来の野生種、Oryza longistaminata と台中 65 の交雑後代から育成した無肥料条件化で大きなバイオマスをしめす低投入適応系統（pLIA）の中から、穂数は少ないものの、
1 穂粒数が多く、矮性の系統（pLIA−4d）を選抜した。
pLIA−4d の形質はバスマティイネの改良に有効であると考えられ、pLIA−4d とバスマティイネの交雑 F２を育成し、収量形質に関する QTL 解析を行った。その結果、12 形質で、13 の QTL を検出できた。特に、第 1 染色体では、1 次枝梗
数と 2 次枝梗数に係る QTL がごく近傍に特定でき、その結果として、1 穂粒数の QTL も近くに検出できた。また、第 6染色体には稈長、稈基径と 1 次枝梗数に係る QTL が近傍に存在することが判明した。さらに、出穂期と種子稔性に係る
QTL も第６染色体で検出された。第 8 染色体では、穂長と止葉長の QTL が検出された。今後は、戻し交雑や F3 を用いて有用な QTL を明らかにしていく予定である。

1. QTL analysis for yield-related traits in F2 of the crossbetween Basmati and pLIA-4d in rice
We developed potential Low Input-Adaptable (pLIA)
lines derived from the cross between Oryza longistaminata,an African wild species and T-65 showing large biomass
under non-fertilized conditions and selected pLIA-4d withfew tillers, many spikelets per panicle and dwarf frompLIA lines. These traits of pLIA-4d were considered to be
useful to improve Basmati. Thus, QTLs for yield-related
traits were analyzed in F2 of the cross between
early-headed Basmati and pLIA-4d. As a result, 13 QTLs
for 12 traits were detected. QTLs for primary and second
branch numbers were found to be located very closely on
chromosome 1, resulting in close location of QTLs for
spikelet number per panicle with QTLs for primary andsecond branch numbers. QTLs for culm length, culm-basediameter and primary branch number were detectedclosely on chromosome 6. Further, QTLs for heading
duration and spikelet fertility were located on chromosome
6. On chromosome 8, there were QTLs for panicle lengthand flag leaf length. Useful QTLs will be analyzed inbackcross and F3 populations.

２．Al ストレス応答機構の１つとしてのエピジェネティック
な遺伝子発現制御機構
シロイヌナズナでは、Al ストレス下でエピジェネティック
な遺伝子発現応答がゲノム全体で見られる。今回、エピジェ
ネティック発現機構関連遺伝子である AvSAMS（メリケンカ
ルカヤ由来 S-adenosyl methionine syntase）や Suvh4（Histone
H3 lysine-9 specific N-methyltransferase）が、Al ストレスでの「DNA とヒストンのメチル化状況の変動」に、強く関わることを変異株を用いて明らかにした。さらに同様の制御機構
は、Al ストレス下のイネ（日本晴）でも「DNA のメチル化
状況の変動」として確認され、広範囲の植物でのこの機構の存在が示唆された。

2. An epigenetic gene-regulation as one of Al stressresponse-mechanisms in Arabidopsis and rice
Previously we investigated a genome-wide epigenetic
gene-regulation under Al stress in Arabidopsis. Recently,
we confirmed that two general key-genes in epigenetic
regulation, AvSAMS1 (A. virginicus S-adenosyl methionine
syntase) and Suvh4 (Histone H3 lysine-9 specific Nethyltransferase), are actually related to the alteration of
methylation status in both DNA and histone H3 protein
under Al stress in this plant. Since an alteration of
methylation status in DNA was also observed in ricegenome (cultivar Nipponbare) under this stress, wesuggest the existence of similar epigenetic gene-regulation
systems in various plants under Al stress.

３．オオムギ由来メチオニンγ-リアーゼ遺伝子の機能と発現
浸透圧ストレスにより植物細胞ではプロリン、ロイシン、
イソロイシンの濃度が有意に上昇する。メチオニンγ-リアー
ゼ（MGL）はイソロイシン生合成の前駆体であるα-ケトブ
チル酸をメチオニンから生成することから、植物由来 MGL
は植物の非生物的ストレス耐性のためのイソロイシン生合成に役割を担うと考えられる。そこで、オオムギや単子葉植物から MGL 遺伝子を同定した。植物由来 MGL は遺伝子配列とアミノ酸配列から、単子葉と双子葉で分類できた。オオム
ギ由来 MGL(HvMGL)はα,β-脱離反応よりもα,γ-脱離反
応を触媒した。HvMGL 遺伝子は乾燥ストレスで有意に発現が増加したが、アスパラギン酸ファミリーアミノ酸、特にメチオニンで発現が有意に減少した。これらの結果から、
HvMGL 遺伝子は乾燥ストレスで特異的に誘導され、非生物
ストレス耐性に役割を担うエチレンやポリアミンの前駆体である S-アデノシルメチオニンやその代謝物の生成に必要なメチオニンを確保するためにメチオニンで抑制されることが示唆された。

3. Function and expression of barley methionine -lyase
gene
The concentrations of free proline, leucine, and isoleucine
increase significantly in plant cells under osmotic stress.
Methionine  -lyase (MGL) catalyzes methionine to produce
-ketobutyrate, which is a precursor of isoleucine
biosynthesis, suggesting that plant MGL plays a role inisoleucine biosynthesis for abiotic stress tolerance in plants.
This study identified MGL genes in barley and somemonocot plants. Plant MGLs of monocots weredistinguishable from those of dicots from their genes andamino acid sequences. Barley MGL (HvMGL) catalyzed ,-elimination reaction more than ,-elimination reaction.
HvMGL gene was up-regulated considerably by drought
stress, but down-regulated by the aspartate family aminoacids, especially by methionine. These results suggest that
HvMGL gene should be induced by drought stressspecifically and be reduced by methionine to reserve
methionine for the production of S-adenosylmethionine
and the following metabolites, which are precursors of
ethylene and polyamines playing a role in abiotic stress
tolerance.

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Group of Genome Regulation

ゲノム制御グループ
４．赤潮原因藻ヘテロシグマの生理生態に関する研究
ヘテロシグマ（Heterosigma akashiwo）は光合成を行う単細胞藻類で、ラフィド藻綱に属する。ヘテロシグマは、密度の高いブルームを形成し、その結果として水域生態系に悪影響を与えることより、その環境中の挙動が重要視されている。
本種はこれまで、温帯に分布すると考えられてきたが、近年、極・熱帯からも見出されるようになった。近年の調査の成果
よりより広い生息域が確認された可能性がある一方で、ヘテ
ロシグマ生息域が実際に広がっている可能性がある。種の地
理的分布の決定要因を探るには、系統地理的解析に有用な分子マーカーが必要となる。私たちは、ヘテロシグマのミトコ
ンドリアゲノム上に、株の由来水域によりユニークな配列を持つ超可変領域を見出し、MtORFvar と命名した。この分子マーカーは、ヘテロシグマの由来水域の決定と共に、種の長距離伝播の可能性を精査するために有用と考えらえる。私たちは、このマーカーを利用して、南北アメリカ沿岸におけるヘテロシグマ分散の歴史を探ると共に、MtORFvar 遺伝子産物がヘテロシグマの適応能力に寄与する可能性を検討したいと考えている。
５．RNA-seq によるコムギ種子休眠性低下突然変異系統
RSD32 の遺伝子発現解析
RSD32 は栽培コムギ農林 61 号より作出した種子休眠性の低下した突然変異系統である。本研究では、RNA-seq 解析に
より RSD32 と農林 61 号の種子胚における遺伝子発現の比較を行った。開花後 20 日（DAP20）の種子胚では、概日時計に関わる複数の遺伝子の発現が系統間で異なった。概日時計の調節遺伝子の種子発達段階（DAP20、30、40）に伴う発現の変動をみると、
朝発現型の CCA1 と LHY の発現は、DAP20および 30 では RSD32 が農林 61 号に比べて低く、DAP40 では両系統間に発現量の差は認められなかった。一方、夜発現型の TOC1 では全ての生育期間を通じて RSD32 で発現が高く、PHYTOCLOCK1 も DAP30 で RSD32 の発現が高かった。これら遺伝子の RSD32 における発現の変動パターンは、
概日時計遺伝子の発現型により異なった。以上の結果より、
RSD32 における種子休眠性の低下には、概日時計遺伝子の制御機構が関与する可能性が考えられた。
６．種子で発現するオオムギ液胞膜型アクアポリン(HvTIPs)のタンパク質間相互作用
液胞膜型アクアポリン (tonoplast intrinsic protein, TIP)は、細胞内で水の輸送や貯蔵、あるいは水ポテンシャルに関わる物質の輸送等により細胞内の浸透圧の調節に関わっている。
我々は、アクアポリンによる種子の発達と乾燥に関わる細胞
内水環境調節を調べるため、オオムギから単離された TIP の解析を行っている。アクアポリンは膜上で４量体を形成し、水を透過する。TIP もまた、単独、あるいは他の分子種とともにホモ四量体、あるいはヘテロ四量体を形成し、水チャネ
ルとしての役割を果たしていると推測される。種子で特異的に発現するオオムギ由来の TIP3;1(HvTIP3;1)は、アフリカツ
メガエル卵母細胞を用いた実験において他の HvTIP（異なるアクアポリン分子種）と共発現させることで異なる水輸送活性を示した。本研究では種子で発現する HvTIPs の発現パターンとタンパク質相互作用について解析した。

4. Ecophysiological study of a bloom-forming alga,

Heterosigma akashiwo
H. akashiwo is a unicellular, photosynthetic alga thatbelongs to Raphidophyceae. The alga forms a dense bloomthat exerts a negative impact on the local ecosystem, thus
its dynamics in nature is of great interest. The species was
regarded as a temperate species. However, recent studies
revealed that the alga is widely observed in different
regions of the world, including the arctic and tropic areas.
The identification of the alga over a wider area may be
merely the result of recent exhaustive surveillances.
Alternatively, the species may have been recently
introduced to these areas. We need molecular markers thatenable identification of the strain to gain insight into themechanism and history of its geographic distribution. We
identified a hypervariable segment on the mitochondrial
genome of H. akashiwo that associates with the geographic
origin of the strains, and termed MtORFvar. The marker
can be utilized to identify geographic origins of the H.
akashiwo strains, and to understand the history of
long-distance dispersion of the species. We will utilize themarker gene to analyze the process of the geographic
dispersion of the species in North America and SouthAmerica, and also would like to understand its potential
importance for adaptation of the species to a wide climate
range.
5. RNA-seq analysis of RSD32 mutant with reduced seed
dormancy in wheat
RSD32 mutant with reduced seed dormancy was
screened from the mutagenized Norin61 that showedstrong seed dormancy. Gene expressions of embryo in
Norin 61 was compared with that in RSD32 by RNA-seq
analysis at different developmental stages of the seed.
Circadian clock-related genes were differentially expressedin embryos of Norin61 and RSD32. Expression of CCA1
and LHY that act in the morning was higher in Norin61
than in RSD32 at 20 days and 30 days after pollination(DAP20 and DAP30), but both lines showed similar
expression at DAP40. On the other hand, TOC1 and
PHYTOCLOCK1 acting in the evening showed higher
expression in RSD32. Expression of these circadian clock
related genes changed depending on their expression type;acting in the morning or in the evening. These results
suggest that the regulation of the circadian clock isinvolved in the reduction of seed dormancy in RSD32.
6. Protein-protein interactions of barley tonoplast intrinsic
proteins, HvTIPs, expressed in seeds
In seeds, there are some mechanisms to control thewater condition of cells during the development anddesiccation of seeds. To investigate the cellular watercondition and the mechanism of the control in seeds, weanalyzed some aquaporins, tonoplast intrinsic proteins(TIPs), which transport water and control the intracellularosmotic pressure in a cell, from barley (HvTIPs).
Aquaporins form tetramers on the membranes of cells andtransport water. This suggests that HvTIPs also form
homotetramers or heterotetramers with other aquaporin
species and play a role as a water channel. HvTIP3;1
specifically accumulated in barley seeds showed water
permeability when HvTIP3;1 was co-expressed with otherTIPs in Xenopus oocytes. In this study, we analyzed theexpression pattern of some HvTIPs expressed in seeds andthe protein-protein interaction. seeds, especially HvTIP3;1,
which accumulates in barley seeds and changes the watertransport activity with other TIPs. This year we advanced
our research on the interaction between HvTIP3;1 andother aquaporin species.

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(Research Core for Future Crops)

次世代作物共同研究コア

Crop Design Research Team

作物デザイン研究チーム
本グループでは、研究所が保有する遺伝資源を活用して、
これまで蓄積してきた環境応答データや植物の様々な生理応答に関する知見を統合し、作物の生産性に有用な鍵遺伝子の探索を推進している。今年度の研究成果の一部は以下の通りである。

With the genetic resources in IPSR, our group has been
integrating a broad range of data and knowledge related tothe physiological responses in plants, and promoting the
research to discover genes that contribute to crop
productivity. Our main achievements in 2017 are described
below.

１．オオムギ出穂日予測モデルの構築研究所が保有するオオムギ系統の生育データおよびゲノム
多型データに基づいて出穂日を予測する計算機モデルを人工
ニューラルネットワークにより構築した。構築したモデルを用いた逆解析によりオオムギの出穂に影響が大きいと考えられる時節を推定した。

1. Development of a model to predict barley heading date
Using datasets of heading date and genome-scale genetic
polymorphisms of barley accessions in IPSR, we developed
a computer model to estimate barley heading date fromgenetic and environmental factors that possibly areassociated with barley flowering. We applied the model toestimate the seasonal period critical to barley flowering.

２．トランスクリプトームデータに基づく遺伝子ネットワー
クの推定
時系列のトランスクリプトームデータに基づいて、遺伝子間の依存関係を推定する方法を開発した。また、野外環境で育成したオオムギ 2 系統に関する時系列トランスクリプトー
ムデータに適用し、遺伝子ネットワークの系統間差を推定した。

2. Inference of gene network based on transcriptome
datasetUsing a time series transcriptome dataset, we developed
a method to infer the dependencies between genes. We also
applied the method to infer the gene network of two barleyaccessions based on the field transcriptome datasets, and to
estimate differences in gene networks between the twobarley accessions.

そのほかに、次世代シーケンスデータの解析をはじめとするバイオインフォマティクスに関連する技術等を所内外の研究者に提供している。

Furthermore, we provided various techniques related tobioinformatics to researchers inside and outside IPSR.

International Collaboration Team

国際共同研究チーム
本チームでは植物研と農学部の教員が兼任となり、植物研の拠点研究領域である「植物遺伝資源・ストレス科学研究」
を国際的に展開するためのネットワーク作り、国際交流を行う。これまで、日本学術振興会国際事業「東アフリカにおける作物ストレス科学研究ネットワーク拠点形成と次世代作物の開発」(平成 22-24 年度)、
「汎アフリカ大学院と協働する資源植物科学イノベーション研究拠点」(平成 26-28 年度)が採択され、平成 29 年度はこのこれらの事業を引き継いだ交流を進めた。
１．ケニア・ウガンダ研究者の受入れと共同研究
平成 29 年度は、ウガンダ国立作物科学研究所からの留学生
１名が、博士前期課程学生として植物・昆虫間相互作用グループ（ガリス）に進学し、ネリカイネの病害虫耐性と揮発物質についての研究を立ち上げた。ウガンダ・マケレレ大学の学生１名を植物・微生物相互作用グループ（谷）に受け入れ（H29 年 12 月~H30 年 2 月、2 ヶ月間）
、メタノール資化性
細菌の走行性について研究を行っている。ケニア・国際熱帯農業研究所から１名の研究者を光環境適応研究グループ（坂本）に受入れ（H30 年 1 月~3 月、2 ヶ月間）
、ソルガム環境耐性に関わる QTL 遺伝子の共同研究をおこなう予定である。
２．ケニアへの研究者派遣と交流の促進
東アフリカでの資源植物科学イノベーション研究拠点とネットワークを広げるため、今年度は１名（坂本）がケニアを訪問し(H30 年 1 月)、ケニア西部におけるソルガム栽培の現状視察とケニア農業研究所を訪問する予定である。また、岡山大学津島キャンパスにて若手を中心とした研究交流の場として 12 月 14 日に「アフリカ・ケニアデー2017」を行った。

This group consists of concurrent faculty members, andaims to establish an international hub and/or exchange
program on Plant Genetic Resources and Stress Science.
Our program has been supported by the Japan Society for
the Promotion of Science (JSPS), under the Asia-Africa
Science Platform (AASP) program under the title“Establishment of crop stress science network for increaseof food production in eastern Africa” (2010-2012) and “Plant
Science and Resource Innovative Research Core with Pan
African University” (2014-2016). In 2017, we continued thecollaborative research projects, accepting researchers from
Kenya and Uganda.
1. Accepting Kenyan and Ugandan researchers andinternational collaboration
Based on the past interaction with the National Crop
Research Institute in Uganda, one researcher was enrolled
in the Graduate School of Environmental and Life Science,as a master student (Supervisor Galis). We invited two
researchers from the International Institute of Tropical
Agriculture in Kenya and Makerere University in Uganda,
to the Plant-Insect Interaction Group (Tani) and Plant
Light Acclimation Research Group (Sakamoto). During
their stay at Okayama University for about two months,
they are expected to learn advanced experimental skills intheir disciplines and performed collaborative projects.
2. Visiting Kenya and Meeting
To promote an exchange between IPSR and other east
African universities, Sakamoto plans to visit theInternational Livestock Research Institute (ILRI) andKenyan Agricultural and Livestock Research Organization(KARLO), Kakamega, Kenya. He will inspect sorghum
fields in the western Kenya, in January, 2018. To promote
networking of young researchers, we organized the “Africa(Kenya) Day 2017” on December 14, 2017, at TsushimaCampus.

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Ecophysiology Research Team

エコフィジオロジー研究チーム
イオンダイナミクス班

Ion Dynamics Section

本研究班では、フィールド環境における作物のレジリエン
スを理解するためのイオンダイナミクス研究を行っている。
今年度の研究成果の一部は以下の通りである。

This research group studies to comprehend resilience ofcrops in the field through ion dynamics research. Our mainachievements in 2017 are described below.

１．塩ストレスフィールドにおける作物のレジリエンスを理解するためのイオンホメオスタシス研究
塩は多くの作物に障害をもたらす。イネおよびオオムギの根におけるナトリウムイオンの動態の理解を目指し、ナトリ
ウムイオンを輸送するイオン輸送体 OsHKT1 およびHvCNGC2 の電気生理学的特徴づけを行った。また、イネにおけるナトリウムイオン吸収において無視できない役割をしているアポプラスティックバイパスフローがナトリウムイオン以外に、カドミウムイオンの吸収に関与していることを発見した。
２．CO2 吸収と蒸散流制御の理解のためのイオンホメオスタ
シス研究
気孔は植物のガス交換において中心的な役割を果たす。ト
マトにおいて機能するアニオン輸送体 ALMT の発現解析を行い、気孔を構成する孔辺細胞で機能する ALMT 輸送体の候補を特定し、電気生理学的特徴づけを行った。
３．イオンイメージングとイオン電極を活用した生体イオン計測による細胞シグナリング研究
イオン電極を用いて、生体膜の二酸化炭素透過性を制御するタンパク質の二酸化炭素透過活性の特徴づけを行った。また、孔辺細胞内のアブシシン酸濃度を定量計測するイメージ
ング技術の開発を行った。

1. Ion homeostasis studies on crop resilience in asalt-stressed field
Sodium ion renders damages to crops. We characterized
electrophysiological properties of the sodium-permeatingtransporters in roots of rice and barley, OsHKT1 andHvCNGC2, to understand sodium dynamics in crop roots.
In addition, we discovered that apoplastic bypass flow,which plays an indispensable role in sodium ion uptake
under salt stress, was involved in cadmium uptake in rice
as well as sodium uptake.
2. Ion homeostasis studies to comprehend CO2 uptake andtranspiration control
Stomata play a pivotal role in gas exchange in plants. We
identified the ALMT anion channel genes, which wereexpressed
dominantly
in
guard
cells,
andelectrophysiologically characterized the ion channel.
3. Cell signaling studies using ion imaging and the ion
electrode
We characterized CO2-permeating proteins thatparticipate in the permeability of CO2 acrossbiomembranes using the hydrogen ion electrode technique.
We developed a method to analyze abscisic acidconcentrations in guard cells.

Rhizosphere Microbiome Section

根圏生態班
本班はイネ、オオムギを対象として年間を通じた植物の生This section was started this year with the aim to

長とその根圏の微生物叢、並びに環境要因としてイオンや野

analyze throughout the year the plant growth and

生植物の測定・観察を通じ、これら要因が複雑に絡み合うネ

rhizosphere microbiome of rice and barley in relation to

ットワークの変動を明らかにしていくことで、病徴や金属イ

environmental factors such as diseases and metal ion

オンストレスに関わる重要な因子を見いだすことを目的としstress and to find changes in the complex network of theseて発足した。今年度は発足間もないためワークショップの企

factors. This beginning year we held a workshop, applied

画、来年度の研究資金調達、サンプリングの手法の確立、シ

for a grant, tested sampling methods, and performed a

ーケンシングのテストラン等を行った。

sequencing test run.

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Crop Innovation Research Team

作物イノベーション研究チーム
エピジェネティクス班

Epigenetics Section

エピジェネティック修飾による遺伝子発現制御は、成長、器官分化、ストレス応答など、植物の様々な生命現象に重要な役割を果たしており、エピジェネティック修飾を各植物において 1 細胞レベルの解像度で解析を行う必要性が高まっている。しかし、植物種および器官・組織によって細胞のサイ
ズ、構造などが異なり、それぞれに適した解析法を用いる必要がある。本研究班では、モデル植物だけでなく、個々の研究者が研究材料とする多様な植物種に利用可能なエピジェネ
ティック修飾解析法を開発するとともに各器官・組織に適した解析法を on demand に提供していく。本年度は、以下の解析法の開発を行った。

Epigenetic gene regulation plays a crucial role in various
biological phenomena in plants including growth,development, and stress responses. The cell size andstructure vary with the plant species and organs/tissues.
Therefore, it is necessary to use an appropriate epigenetic
modification analysis method for each plant species andorgans/tissues. We are developing epigenetic modification
analysis methods which can be used not only for model
plants but also for various plant species which are used as
research materials. In addition, we will provide analysis
methods suitable for each plant organ/tissue. This year, wedeveloped the following analysis methods.

１．植物組織内におけるエピジェネティック修飾解析法の開発とその自動化
植物器官および組織内の個々の細胞のエピジェネティック
修飾は、個別に制御されていると考えられるが、これまで主にこれらの解析に用いられてきたクロマチン免疫沈降法では原理的に組織内の個々の細胞の状態を知ることはできない。
本研究班では、この問題を解決し、個々の細胞のエピジェネ
ティック修飾情報を得るために、植物器官および組織内の個々の位置情報を保ったまま、俯瞰的かつ細胞レベルの解像度をもつ組織免疫染色を用いたエピジェネティック修飾解析法を開発している。加えて、この方法によって得られる大量のデータの自動解析法の開発も行っている。
今後は、上記手法の開発を行うとともに、他研究者からのニーズに合わせた解析法の開発を共同研究として進めていく。

1. Development of epigenetic modification analysis
methods in plant tissue and its automation
Epigenetic modifications of individual cells in plantorgans/tissues are considered to be individually controlled,
but it is difficult to know how each cell is modified by thechromatin immunoprecipitation method, which has been
mainly used for these analyses. In order to solve thisproblem and to obtain epigenetic modification informationof individual cells, we are developing epigenetic
modification analysis methods using immunohistochemical
staining, which provides a bird's-eye view and single
cell-level resolution keeping positional information ofindividual cells in organs/tissues.

オオムギ遺伝子改変班

Barley Genetic Modification Section

本研究班は、オオムギの遺伝子改変技術の高度化とオオム
ギを利用した作物イノベーション研究拠点の構築を行っている。オオムギ-微生物間相互作用、種子澱粉工学、環境ストレス耐性育種などの分野で共同研究体制を整え、資源植物科学の発展に寄与することを目的としている。

Our research aims to upgrade the genetic modification
technology in barley and to establish a research core forcrop innovation using barley. We are conducting joint
research in the fields of barley-microbial interaction, seed
starch engineering and environmental stress tolerance
breeding.

１．幹細胞化メカニズムの解明とオオムギの形質転換技術の高度化
オオムギの形質転換技術を高度化するために、再分化過程の要である幹細胞化機構の実態解明を目指している。再分化
効率の品種間差に注目した遺伝学的解析に加え、メタボロー
ム解析や再分化効率を向上するためのケミカルスクリーニン
グを行っている。

1. Elucidation of stem cell formation mechanism andsophistication of barley transformation technology
We are analyzing the molecular mechanism of barley
stem cell formation which is the essential part of theregeneration process. This includes genetic analysis
focusing on varietal differences in totipotency, metabolomic
analysis and chemical screening to improve regeneration
efficiency.

２．オオムギ生存圏におけるウイルス叢の解明
オオムギの生存圏に存在するウイルスを網羅的に解析し、カタログ化を行っている。これらの成果を元に、オオムギの遺伝子解析・改変に有効なウイルスベクターの構築ならびにオオムギの耐病性メカニズムや生物間相互作用研究への応用を目指している。
３．オオムギ種子の澱粉粒の形状育種
オオムギ種子の澱粉粒の形状の改変を行い、新しい澱粉特性を有するオオムギの開発を行なっている。また、オオムギの澱粉粒の形成機構の解明を目指した基盤研究を行っている。
４．オオムギの環境ストレス耐性育種のための基盤研究
高/低温ストレス耐性遺伝子の導入やミネラルストレス関
連遺伝子を改変した形質転換オオムギのセットを作製し、オオムギの環境ストレス耐性機構の網羅的解析を目指している。

2. Analysis of viromes in the ecosphere of barley
We are comprehensively analyzing the viromes in thebarley ecosphere to construct effective viral vectors forgenetic transformation and to understand the disease
resistance and biological interaction in barley.
3. Morphological breeding of starch grains in barley seeds
Modification of starch grain morphology of barley seeds
is in progress. It will develop barley plants with novel
starch properties and increase the availability of barley.
Basic research to elucidate the molecular mechanism of
starch grain formation is also conducted.
4. Elucidation of environmental stress tolerance in barley
Introduction of environmental stress-related genes, suchas temperature-stress genes and mineral absorption/
exclusion-related genes into barley is in progress. We willdevelop transgenic barley plants over-/down-regulatingthese genes to analyze the stress tolerance mechanism
comprehensively in the future.

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出版物リスト (List of Publication)
大気環境ストレスユニット (Atmospheric Stress Unit)
光環境適応研究グループ (Plant Light Acclimation Research Group)(1) Ohnishi, N. Towards understandings the regulation of photosynthesis under natural environments: Analyses for the
behavior of photoacclimation processes in the mutant strains of a green alga Chlamydomonas reinhardtii under
outdoor conditions. Bull. Plankton Soc. Japan 64 (1): 40-44. (2017. 2.)(2) Kohzuma, K., Sato, Y., Ito, H., Okuzaki, A., Watanabe, M., Kobayashi, H., Nakano, M., Yamatani, H., Masuda, Y.,
Nagashima, Y., Fukuoka, H., Yamada, T., Kanazawa, A., Kitamura, K., Tabei, Y., Ikeuchi, M., Sakamoto, W.,
Tanaka, A. and Kusaba, M. The non-Mendelian green cotyledon gene in soybean encodes a small subunit of
Photosystem II. Plant Physiology 173: 2138-2147. (2017. 4.)(3) Salesse, C., Sharwood, R., Sakamoto, W. and Stern, D. The rubisco chaperone BSD2 may regulate chloroplast
coverage in maize bundle sheath cells. Plant Physiology 175: 1624-1633. (2017. 12.)環境応答機構研究グループ (Group of Environmental Response Systems)(1) Mori, I. C., Ikeda, Y., Matsuura, T., Hirayama, T. and Mikami, K. Phytohormones in red seaweeds: a technicalreview of methods for analysis and a consideration of genomic data. Botanica Marina. 60: 153-170. (2017. 4.)(2) Ikeda, Y., Pélissier, T., Bourguet, P., Becker, C., Pouch-Pélissier, M. N., Pogorelcnik, R., Weingartner, M., Weigel,D., Deragon, J. M. and Mathieu, O. Arabidopsis proteins with a transposon-related domain act in genesilencing. Nature Commun. 8: 15122. (2017. 5.)(3) Shimada, T., Endo, T,. Rodríguez, A., Fujii, H., Goto, S., Matsuura, T., Hojo, Y., Ikeda, Y., Mori, I. C., Fujikawa,T., Peña, L. and Omura, M. Ectopic accumulation of linalool confers resistance to Xanthomonas citri subsp.
citri in transgenic sweet orange plants. Tree Physiol. 37: 654-664. (2017. 5.)(4) Gupta, A., Hisano, H., Hojo, Y., Matsuura, T., Ikeda, Y., Mori, I. C. and Senthil-Kumar, M. Global profiling ofphytohormone dynamics during combined drought and pathogen stress in Arabidopsis thaliana reveals ABA
and JA as major regulators. Sci. Rep. 7: 4017. (2017. 6.)(5) Khokon, M.A.R., Salam, M.A., Jammes, F., Ye, W.X., Hossain, M.A., Okura, E., Nakamura, Y., Mori, I.C., Kwak,
J.M. and Murata, Y. MPK9 and MPK12 function in SA-induced stomatal closure in Arabidopsis thaliana.
Biosci. Biotech. Biochem. 81: 1394-1400. (2017. 7.)(6) Ishiga, Y., Watanabe, M., Ishiga, T., Tohge, T., Matsuura, T., Ikeda, Y., Hofgen, R., Fernie, A. R. andMysore, K.

S. The SAL-PAP chloroplast retrograde pathway contributes to plant immunity by regulating glucosinolate
pathway and phytohormone signaling. Mol. Plant Microbe Interact. 30: 829-841. (2017. 8.)(7) Bowman J. L., et al. (112 名省略, Ikeda, Y. : 47 番目) Insights into land plant evolution garnered from the
Marchantia polymorpha genome. Cell 171: 287-304. (2017. 10.)(8) 提箸祥幸・保田 浩・北條優子・松浦恭和・森 泉・佐藤 裕

イネの低温初期伸長性に植物ホルモンが及ぼす影響. 日本作物学会紀事 86: 367-374. (2017. 10.)(9) Iida, M., Takano, S., Matsuura, T., Mori, I. C. and Takagi, S. Circumnutation and distribution of phytohormones in
Vigna angularis epicotyls. J. Plant Res. doi: 10.1007/s10265-017-0972-y. (2017. 8. Online preview)- 23 -

土壌環境ストレスユニット (Soil Stress Unit)
植物ストレス学グループ (Group of Plant Stress Physiology)(1) Yamaji, N., Takemoto, Y., Miyaji, T., Mitani-Ueno, N., Yoshida, K. T. and Ma, J. F. Reducing phosphorus
accumulation in rice grains with an impaired transporter in the node. Nature 541: 92-95. doi:
10.1038/nature20610 (2017. 1.)(2) Chungopast, S., Duangkhet, M., Tajima, S., Ma, J. F. and Nomura, M. Iron-induced nitric oxide leads to an increasein the expression of ferritin during the senescence of Lotus japonicas. J. Plant Physiol. 208: 40-46. doi:
10.1016/j.jplph.2016.11.004 (2017. 1.)(3) Shao, J. F., Fujii-Kashino, M., Yamaji, N., Fukuoka, S., Shen, R. F. and Ma, J. F. Isolation and characterization of arice line with high Cd accumulation for potential use in phytoremediation. Plant Soil 410: 357-368. doi:
10.1007/s11104-016-3014-y (2017. 1.)(4) Shao, J. F., Yamaji, N., Shen, R. F. and Ma, J. F. The key to Mn homeostasis in plants: Regulation of Mn
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Fujii-Kashino, M., Horiuchi, T., Nayef, M., A., Shabala, S., An, G., Ma, J. F. and Horie, T. OsHKT1;5
mediates Na+ exclusion in the vasculature to protect leaf blades and reproductive tissues from salt toxicity inrice. Plant J. 91: 657-670. (2017. 8.)(11) Lei, G. J., Yokosho, K., Yamaji, N., Fujii-Kashino, M. and Ma, J. F. Functional characterization of two half-size
ABC transporter genes in aluminium-accumulating buckwheat. New Phytol. 215: 1080-1089. (2017. 8.)(12) Takemoto, Y., Tsunemitsu, Y., Fujii-Kashino, M., Mitani-Ueno, N., Yamaji, N., Ma, J. F., Kato, S., Iwasaki. K. andUeno, D. The tonoplast-localized transporter MTP8.2 contributes to manganese detoxification in the shoots
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10.1371/journal.pone.0187224 (2017. 10.)(15) Li, C., Chen, G., Mishina, K., Yamaji, N., Ma, J. F., Yukuhiro, F., Tagiri, A., Liu, C., Pourkheirandish, M., Anwar,N., Ohta, M., Zhao, P., Lundqvist, U., Li, X. and Komatsuda, T. A GDSL-motif esterase/acyltransferase/lipase
is responsible for leaf water retention in barley. Plant Direct 1: 1-12. DOI: 10.1002/pld3.25 (2017. 11.)(16) Shao, J. F., Che. J., Yamaji, N., Shen, R. F. and Ma, J. F. Silicon reduces cadmium accumulation by suppressing
expression of transporter genes involved in cadmium uptake and translocation in rice. J. Exp. Bot. 68:
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involved in Al tolerance in buckwheat. Plant Cell Physiol. 58: 2179-2189. doi: 10.1093/pcp/pcx152 (2017.
12.)- 24 -

植物分子生理学グループ (Group of Plant MolecularPhysiology)(1) Rhee, J., Horie, T., Sasano, S., Nakahara, Y. and Katsuhara, M. Identification of an H 2O2 permeable PIP aquaporin
in barley and a serine residue promoting H2O2 transport. Physiologia Plantarum 159: 120-128. (2017. 1.)(2) Kariya, K., Sameeullah, M., Sasaki, T. and Yamamoto, Y. Overexpression of the sucrose transporter gene NtSUT1
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Nutr. 63: 45-54. (2017. 2.)(3) Takanashi, K., Yamada, Y., Sasaki, T., Yamamoto, Y., Sato, F. and Yazaki, K. A multidrug and toxic compound
extrusion transporter mediates berberine accumulation into vacuoles in Coptis japonica. Phytochemistry 138:
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doi.org/10.1016/j.jinorgbio.2017.09.008 (2017. 9. Online preview)

環境生物ストレスユニット (Biotic Stress Unit)
植物・微生物相互作用グループ (Group of Plant-Microbe Interactions)(1) Gilmore, J.L., Yoshida, A., Deguchi, K., Asai, S., Aizaki, S., Kumeta, M., Hyodo, K., Okuno, T., Wakita, T. and
Takeyasu, K. Structural Analysis of Long Single-Stranded RNA Molecules with Atomic Force Microscopy
Imaging. Springer Proceedings in Physics 186: 3-9. DOI: 10.1007/978-3-319-46601-9_1 (2017. 1.)(2) Dietzgen, R., Kondo, H., Goodin, M., Kurath, G. and Vasilakis, N. The family Rhabdoviridae: mono- and bipartite
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10.1073/pnas.1610212114 (2017. 2.)(4) Andika, I. B., Jamal, A., Kondo, H. and Suzuki, N.The SAGA complex mediates the transcriptional up-regulation ofantiviral RNA silencing in the chestnut blight fungus. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 114: E1282-E1290 doi:
10.1073/pnas.1610212114 PNAS Plus (2017. 4.)(5) Postler, T.S., et al. Possibility and challenges of conversion of current virus species names to Linnaean binomials.
Systematic Biology 66: 463-473. (2017. 5.)(6) Hyodo, K., Suzuki, N., Mise, K. and Okuno, T. Roles of superoxide anion and hydrogen peroxide during replicationof two unrelated plant RNA viruses in Nicotiana benthamiana. Plant Signal. Behav. 12(6): e1338223. DOI:
10.1080/15592324.2017.1338223 (2017. 6.)(7) Kondo, H., Hirota K., Maruyama, K., Andika, I. B. and Suzuki, N. A possible occurrence of genome reassortments
among bipartite rhabdoviruses. Virology 508: 18-25. (2017. 8.)(8) Amarasinghe, G.K., et al. Taxonomy of the order Mononegavirales-update 2017. Archives of Virology 162:2493-2504. (2017. 8.)(9) Suzuki, N. Frontiers in Fungal Virology. Journal of General Plant Pathology 83: 419-423. (2017. 9.)(10) Tajima, Y., Iwakawa, HO., Hyodo, K., Kaido, M., Mise, K. and Okuno, T. Requirement for eukaryotic translation
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mosaic virus. Virology 509: 152-158. DOI: 10.1016/j.virol.2017.06.015 (2017. 9.)(11) Li, L., Andika, I.B., Xu, Y., Zhang, Y., Xin, X., Hu, L., Sun, Z., Hong, G., Chen, Y., Yan, F., Yang, J., Li, J. andChen, J. Differential characteristics of viral siRNAs between leaves and roots of wheat plants naturally
Infected with wheat yellow mosaic virus, a soil-borne virus. Frontiers in Microbiology 8: 1802. (2017. 9.)(12) Seoane, S., Hyodo, K. and Ueki, S. Chloroplast genome sequences of seven strains of the bloom-forming
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(13) Andika, I.B., Wei, S., Cao, C., Salaipeth, L., Kondo, H. and Sun, L. Phytopathogenic fungus hosts a plant virus: anaturally occurring cross-kingdom viral infection. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 114: 12267-12272. (2017. 11.)(14) Hyodo, K., Nagai, H. and Okuno, T. Dual function of a cis-acting RNA element that acts as a replication enhancer
and a translation repressor in a plant positive-stranded RNA virus. Virology 512: 74-82. DOI:
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https://doi.org/10.1371/journal.ppat.1006755 (2017. 12.)(16) Hisano, S., Zhang, R., Faruk, M. I., Kondo, H. and Suzuki, N. A neo-virus-lifestyle exhibited by a (+)ssRNA virus
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11. Online preview)(17) Hillman, B. I., Aulia, A. and Suzuki, N. Viruses of plant-interacting fungi. Advances in Virus Research 100th
Special Issue. https://doi.org/10.1016/bs.aivir.2017.10.003 (2017. 12. Online preview)(18) Vainio, E. J., Chiba, S., Ghabrial, S. A., Maiss, E., Roossinck, M. J., Sabanadzovic, S., Suzuki, N., Nibert, M., Xie,
J. and ICTV consortium. ICTV Virus Taxonomy Profile: Partitiviridae. Journal of General Virology (2017. 12.
Online preview)

植物・昆虫間相互作用グループ (Group of Plant-Insect Interactions)(1) Tzin, V., Hojo, Y., Strickler, S. R., Bartsch, L. J., Archer, C. M., Ahern, K. R., Zhou, S., Christensen, S. A., Galis, I.,
Mueller, L. A. and Jander, G. Rapid defense responses in maize leaves induced by Spodoptera exigua
caterpillar feeding. J. Exp. Bot. 68: 4709-4723. doi: 10.1093/jxb/erx274 (2017. 8.)(2) Wari David ・佐藤 翼・山下 純・園田昌司 カブリダニ類（ダニ目：カブリダニ科）の天敵温存植物ヤイトバナ（アカネ科）がモモ圃場におけるハダニ類（ダニ目：ハダニ科）の発生に及ぼす影響. 日本応用動物昆虫学会誌
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loreyi) and specialist (Parnara guttata) herbivores in rice. J. Chem. Ecol. 43: 929-943. doi:
10.1007/s10886-017-0882-4 (2017. 9.)(4) Sumida, S., Ito, M., Galis, I., Nakatani, H., Shinya, T., Ohnishi, K., Hikichi, Y. and Kiba, A. Phosphoinositide
3-kinase participates in L-methionine sulfoximine-induced cell death via salicylic acid mediated signaling in
Nicotiana benthamiana. J. Plant Physiol. 218: 167-170. doi: 10.1016/j.jplph.2017.07.016 (2017. 11.)(5) Matsumura, M., Sanada-Morimura, S., Otuka, A., Sonoda, S., Van Thanh, D., Van Chien, H., Van Tuong, P., Loc,
P. M., Liu, Z. W., Zhu, Z. R., Li, J. H., Wu, G. and Huang, S. H. Insecticide susceptibilities of the two rice
planthoppers Nilaparvata lugens and Sogatella furcifera in East Asia, the Red River Delta, and the Mekong
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遺伝資源ユニット (Genetic Resources Unit)
ゲノム多様性グループ (Group of Genome Diversity)(1) 佐藤和広 オオムギの種子休眠性遺伝子の発見. バイオサイエンスとバイオインダストリー 75(1): 40-41.
(2017. 1.)(2) 久野 裕 オオムギのゲノム編集. アグリバイオ 1: 19-20. (2017. 1.)(3) Hisano, H., Sakamoto, K., Takagi, H., Terauchi, R. and Sato, K. Exome QTL-seq maps monogenic locus and QTLs
in barley. BMC Genomics 18: 125. (2017. 2.)(4) Julio C. M. Iehisaa, Okada, M., Sato, K. and Takumi, S. Detection of splicing variants in the leaf and spiketranscripts of wild diploid wheat Aegilops tauschii and transmission of the splicing patterns to synthetic
hexaploid wheat. Plant Gene 9: 6-12. (2017. 3.)- 26 -

(5) Hisano, H., Meints, B., Moscou, M. J., Cistue, L., Echávarri, B., Sato, K. and Hayes, P. M. Selection oftransformation-efficient barley genotypes based on TFA (transformation amenability) haplotype and higher
resolution mapping of the TFA loci. Plant Cell Rep. 36: 611-620. (2017. 4.)(6) 佐藤和広 オオムギ遺伝資源を活用した風味が劣化しづらいビールの開発. 山陽技術雑誌 65: 3-5. (2017.
4.)(7) Hirasawa, T., Sato, K., Yamaguchi, M., Narita, R., Kodama, A., Adachi, S., Ookawa, T. and Sato, K. Differences indry matter production, grain production, and photosynthetic rate in barley cultivars under long-term salinity.
Plant Production Sci. 20: 288-299. (2017. 6.)(8) Onishi, K., Yamane, M., Yamaji, N., Tokui, M., Kanamori, H., Wu, J., Komatsuda, T. and Sato, K. Sequence
differences in the seed dormancy gene Qsd1 among various wheat genomes. BMC Genomics 18: 497. (2017.
6.)(9) Gupta, A., Hisano, H., Hojo, Y., Matsuura, T., Ikeda, Y., Mori, I.C. and Senthil-Kumar, M. Global profiling ofphytohormone dynamics during combined drought and pathogen stress in Arabidopsis thaliana reveals ABA
and JA as major regulators. Sci. Rep. 7: 4017. (2017. 6.)(10) Miwa, A., Sawada, Y., Tamaoki, D., Hirai, M., Kimura, M., Sato, K. and Nishiuchi, T. Nicotinamidemononucleotide and related metabolites induce the disease resistance against the fungal phytopathogen,Fusarium graminearum in Arabidopsis thaliana and Hordeum vulgare. Sci. Rep. 7: 6389. (2017. 7.)(11) Nakamura, S., Pourkheirandish, M., Morishige, H., Sameri, M., Sato, K. and Komatsuda, T. Quantitative Trait Lociand Maternal Effects Affecting the Strong Grain Dormancy of Wild Barley (Hordeum vulgare ssp.
spontaneum)". Frontiers Plant Sci. 8: 1840. (2017. 10.)(12) Kakizaki, A., Kawahara, T., Zhuk, M.A., Smekalova, T.N., Sato, K., Abe, T. and Sasanuma, T. Genetic
characterization of genetic resources of Aegilops tauschii, wheat D genome donor, newly collected in North
Caucasia. American J. Plant Sci. 8: 2769-2784. (2017. 10.)(13) 佐藤和広 醸造用オオムギ小史. 日本醸造協会誌 112: 799. (2017. 11.)(14) Saito, M., Tanaka, T., Sato, K., Vrinten, P. and Nakamura, T. A single nucleotide polymorphism in the “Fra” gene
results in fractured starch granules in barley. Theor. Appl. Genet. DOI: 10.1007/s00122-017-3006-1 (2017. 11.
Online preview)

遺伝資源機能解析グループ (Group of Genetic Resources and Functions)(1) Kokubo, Y., Nishizaka, M., Ube, N., Yabuta, Y., Tebayashi, S., Ueno, K., Taketa, S. and Ishihara, A. Distributionof thetryptophan-pathway-derived defensive secondary metabolites gramine and benzoxazinones in Poaceae.
Bioscience, Biotechnology, and Biochemistry 81: 431-440. (2017. 3.)(2) Ube, N., Nishizaka, M., Ichiyanagi, T., Ueno, K., Taketa, S. and Ishihara, A. Evolutionary changes in defensive
specialized metabolism in the genus Hordeum. Phytochemistry 141: 1-10. (2017. 9.)(3) Yoshikawa, T. and Taketa, S. Narrow leaf mutants in the grass family. In Kanauchi, M. (ed.) Brewing Technology,
InTech, pp. 3-28. (2017. 9.)

野生植物グループ (Group of Wild Plant Science)(1) 園田昌司・山下 純・岸本英成 モモ圃場におけるカブリダニの植物餌資源の利用. 植物防疫 71: 28-34. (2017.
2.)(2) Hata, D., Higashi, H., Yakubov, V., Barkalov, V., Ikeda, H. and Setoguchi, H. Phylogeographical insight into the
Aleutian flora inferred from the historical range shifts of the alpine shrub Therorhodion camtschaticum (Pall.)
Small (Ericaceae). Journal of Biogeography 44: 283-293. (2017. 2.)(3) Kameoka, S., Sakio, H., Abe, H., Ikeda, H. and Setoguchi, H. Genetic structure of Hepatica nobilis var. japonica,
focusing on within population flower color polymorphism. Journal of Plant Research 130: 263-271. (2017. 3.)- 27 -

(4) David Wari・佐藤 翼・山下 純・園田昌司 カブリダニ類（ダニ目：カブリダニ科）の天敵温存植物ヤイトバナ（アカネ科）がモモ圃場におけるハダニ類（ダニ目：ハダニ科）の発生に及ぼす影響. 日本応用動物昆虫学会誌
61: 178-183. (2017. 8.)(5) Ikeda, H., Eidesen, P., Barkalov, V., Yakubov, V., Brochmann, C. and Setoguchi, H. Late Pleistocene origin of theentire circumarctic range of the arctic-alpine plant Kalmia procumbens. Molecular Ecology 26: 5773-5783.
(2017. 10.)(6) Ikeda, H. and Setoguchi, H. Importance of Beringia for the divergence of two northern Pacific alpine plants,
Phyllodoce aleutica and Phyllodoce glanduliflora (Ericaceae). Biological Journal of Linnean Society 122:249-257. (2017. 10.)

ゲノム育種ユニット (Applied Genomics Unit)
核機能分子解析グループ (Group of Nuclear Genomics)(1) Nagaki, K., Yamaji, N. and Murata, M. ePro-ClearSee: a simple immunohistochemical method that does not require
sectioning of plant samples. Scientific Reports 7: srep42203. (2017. 2.)

ゲノム制御グループ (Group of Genome Regulation)(1) Higashi, A., Nagai, S., Seone, S. and Ueki, S. A hypervariable mitochondrial protein coding sequence associatedwith geographical origin in a cosmopolitan bloom-forming alga, Heterosigma akashiwo. Biology Letters DOI:
10.1098/rsbl.2016.0976 (2017. 4.)(2) Orlov, O. I., Novikova, N. D., Polikarpov, N. A., Levinskikh, M. A., Deshevaya, E. A., Sugimoto, M., Alekseev, V.
R., Okuda, T., Gusev, O. A. and Sychev, V. N. Planetary protection challenges in space exploration missions
and ways of their resolution with account of Russian exobiology experiments. REACH 6: 1-34. (2017. 7.)(3) Fukushima, A., Ohta, H., Yokogami, N., Tsuda, N., Yoshida, A., Kyozuka, J. and Maekawa, M. Effects of genes
increasing the number of spikelets per panicle, TAW1 and APO1, on yield and yield-related traits in rice.
Plant Production Science DOI: 10.1080/1343943X.2017.1365614 (2017. 8.)(4) Sugimoto, M., Tanaka, H. and Murakami, N. Molecular characterization of barley methionine γ-lyase andexpression by abiotic stress and aspartate family amino acids. J. Plant Biochem. Physiol. 5: 199. (2017. 10.)(5) Seoane, S., Hyodo, K. and Ueki, S. Chloroplast genome sequences of seven strains of bloom-forming raphidophyte,
Heterosigma akashiwo. Genome Annoucements DOI:10.1128/genomeA.01030-17 (2017. 10.)(6) 力石和英 RNA-seq 解析を用いたコムギ種子休眠制御遺伝子 RSD32 の同定．公益財団法人エリザベス・アーノ
ルド富士財団 平成 28 年度報告書 pp. 105-115. (2017. 11.)(7) Higashi, A., Nagai, S., Salomon, P. S. and Ueki, S. A unique, highly variable mitochondrial gene with coding
capacity of Heterosigma akashiwo, class Raphidophyceae. J. Appl. Phycol. 29: 2961-2969. doi: 10.1007/
s10811-017-1142-2 (2017. 12.)

次世代作物共同研究コア (Research Core for Future Crops)
作物デザイン研究チーム (Crop Design Research Team)(1) Sano, N., Kim, J.S., Onda, Y., Nomura, T., Mochida, K., Okamoto, M. and Seo, M. RNA-Seq using bulked
recombinant inbred line populations uncovers the importance of brassinosteroid for seed longevity after
priming treatments. Sci. Rep. 7: 8095. (2017. 8.)- 28 -

(2) Nasr Esfahani, M., Inoue, K., Chu, H.D., Nguyen, K.H., Van Ha, C., Watanabe, Y., Burritt, D.J., Herrera-Estrella,L., Mochida, K. and Tran, L.P. Comparative transcriptome analysis of nodules of two
Mesorhizobium-chickpea associations with differential symbiotic efficiency under phosphate deficiency. Plant
J. 91: 911-926. (2017. 9.)(3) Ren, Y., Sekine-Kondo, E., Shibata, R., Kato-Itoh, M., Umino, A., Yanagida, A., Satoh, M., Inoue, K., Yamaguchi,T., Mochida, K., Nakae, S., Van Kaer, L., Iwabuchi, K., Nakauchi, H. and Watarai, H. A Novel Mouse Modelof iNKT Cell-deficiency Generated by CRISPR/Cas9 Reveals a Pathogenic Role of iNKT Cells in Metabolic
Disease. Sci. Rep. 7: 12765. (2017. 10.)(4) Koda, S., Onda, Y., Matsui, H., Takahagi, K., Yamaguchi-Uehara, Y., Shimizu, M., Inoue, K., Yoshida, T., Sakurai,
T., Honda, H., Eguchi, S., Nishii, R. and Mochida, K. Diurnal Transcriptome and Gene Network Represented
through Sparse Modeling in Brachypodium distachyon. Front Plant Sci. 28: 2055. (2017. 11.)(5) Mochida, K. and Shinozaki, K. Information Resources for Functional Genomics Studies in Brachypodium
distachyon. Methods Mol. Biol. (2017. 10. Online preview)(6) Kouzai, Y., Kimura, M., Watanabe, M., Kusunoki, K., Osaka, D., Suzuki, T., Matsui, H., Yamamoto, M., Ichinose,Y., Toyoda, K., Matsuura, T., Mori, I.C., Hirayama, T., Minami, E., Nishizawa, Y., Inoue, K., Onda, Y.,
Mochida, K. and Noutoshi, Y. Salicylic acid-dependent immunity contributes to resistance against Rhizoctonia
solani, a necrotrophic fungal agent of sheath blight, in rice and Brachypodium distachyon. New Phytol. (2017.
10. Online preview)

エコフィジオロジー研究チーム (Ecophysiology Research Team)
イオンダイナミクス班 (Ion Dynamics Section)(1) Kariya, K., Tsuchiya, Y., Sasaki, T. and Yamamoto, Y. Aluminium-induced cell death requires upregulation of
NtVPE1 gene coding vacuolar processing enzyme in tobacco (Nicotiana tabacum L.). J. Inorg. Biochem.
doi.org/10.1016/j.jinorgbio.2017.09.008 (2017. 9. Online preview)- 29 -

国際会議およびシンポジウム(List of International Conferences and Symposia)
大気環境ストレスユニット (Atmospheric Stress Unit)
光環境適応研究グループ (Plant Light Acclimation Research Group )(1) Sakamoto, W. Protein degradation machineries in chloroplasts: basic components and their role in chloroplastbiogenesis and homeostasis. PSC invited seminar, Shanghai Center for Plant Stress Biology (PSC), Chinese
Academy of Sciences, Shanghai, China, February 23, 2017.
(2) Sakamoto, W. High-throughput QTL analysis toward understanding stay-green and other important traits insorghum. Special Seminar, International Livestock Research Center, Nairobi, Kenya, March 20, 2017.
(3) Sakamoto, W. Chloroplast biogenesis and homeostasis: general view and a recent work in chloroplast DNA
degradation during leaf senescence. Special Seminar, China National Rice Research Institute, Hangzhou,
China, May 22, 2017.
(4) Sakamoto, W. Chloroplast DNAs are degraded during leaf senescence: A concept of phosphorus reservoir. Invited
Seminar, National Chung Hsing University, Taichung, Taiwan, June15, 2017.
(5) Sakamoto, W. and Takami, T. Chloroplast DNA Degradation Mediated by DPD1 Nuclease May Serve as Nutrient
Salvage in Flowering Plants. Plant Biology 2017, Honolulu, Hawaii, June 24-28, 2017.
(6) Sakamoto, W., Ohnishi, N. and Takami, T. Chloroplast DNA and nutrient salvage: a new concept. Taiwan-Japan
Plant Biology 2017, Academia Sinica, Taipei, Taiwan, November 3-6, 2017.
(7) Kato, Y. and Sakamoto, W. Possible regulation mechanisms of chloroplastic FtsH metalloprotease by protein
phosphorylation. Taiwan-Japan Plant Biology 2017, Academia Sinica, Taipei, Taiwan, November 3-6, 2017.
(8) Ohnishi, N., Zhang, L. and Sakamoto, W. VIPP1, a chloroplast membrane integrity-maintaining protein, has
GTP-binding and hydrolysis activities in vitro. Taiwan-Japan Plant Biology 2017, Academia Sinica, Taipei,
Taiwan, November 3-6, 2017.
(9) Nishimura, K., Ishimori, M., Sekiya, T., Watson, S., Takami, T., Miyaji, T. and Sakamoto, W. Nuclear transcriptome
rewiring involving a peptide-exporting ABC transporter on chloroplast envelopes. Taiwan-Japan Plant Biology
2017, Academia Sinica, Taipei, Taiwan, November 3-6, 2017.
(10) Nishioka,K., Kato, Y., Ozawa, S., Takahashi, Y. and Sakamoto, W. Comprehensive analysis of phosphoprotein inthylakoid membranes. Taiwan-Japan Plant Biology 2017, Academia Sinica, Taipei, Taiwan, November 3-6,2017.

環境応答機構研究グループ (Group of Environmental Response Systems)(1) Ikeda, Y. Epigenetic response to various environments in plants and its mechanism. 33rd IPSR International
Symposium and 9th Symposium on Plant Stress Sciences, Kurashiki, Japan, March 6-7, 2017.
(2) Mochida, K., Takahagi, K., Matsuura, T., Ikeda, Y., Saisho, D. and Hirayama, T. Unlocking physiological dynamics
throughout crop lifecycles under field condition. 2 nd Agriculture and Climate Change Conference, Stiges,
Spain, March 26-28, 2017.
(3) Ooi, L. and Mori, I.C. Stomata response against sulfur dioxide. Plant Biology 2017, Honolulu, Hawaii, USA, June
24-28, 2017.
(4) Mori, I.C. Cyclic nucleotide gated channel in barley roots – unique characteristics of HvCNGC2-3. Plant Signaling& Behavior 2017, Matsue, Japan, June 26-30, 2017.
(5) Mori, I.C. Cyclic nucleotide gated channel in barley roots. India-Japan Joint Sakura Science Symposium, Okayama,
Japan, September 7-8, 2017.

- 30 -

(6) Ooi, L. Stomatal response against sulfur dioxide. India-Japan Joint Sakura Science Symposium, Okayama, Japan,
September 7-8, 2017.
(7) Hirayama, T., Saisho, D., Ikeda, Y., Sumi, N., Hattori, K., Hiroyuki, T., Umezaki, T. and Mochida, K. Data driven
crop design technology. Taiwan-Japan Plant Biology 2017, Taipei, Taiwan, November 3-6, 2017.
(8) Ooi, L. and Mori, I.C. Stomata response against sulfur dioxide. Taiwan-Japan Plant Biology 2017, Taipei, Taiwan,
November 3-6, 2017.
(9) Mori, I.C. Diverse roles of abscisic acid receptors in stomatal guard cells. Jilin University-Okayama University
Joint Sakura Science Workshop, Okayama, Japan, November 29-30, 2017.
(10) Ikeda, Y., Nishihama, R., Yamaoka, S., Arteaga-Vazquez M. A., Grimanelli, D., Martienssen R. A., Yamato, K. T.,
Kohchi, T. and Hirayama, T. The role of DNA methylation in Marchantia polymorpha. The 65th NIBB
Conference: Renaissance of Marchantia polymorpha -the genome and beyond-, Okazaki, Japan, December
16-18, 2017.

土壌環境ストレスユニット (Soil Stress Unit)
植物ストレス学グループ (Group of Plant Stress Physiology)(1) Ma, J. F.

Node-based transporters for mineral element distribution in rice. Plant Biology 2017, Honolulu, Hawaii,

U.S.A., June 24-28, 2017.
(2) Ma, J. F.

Genes controlling cadmium and arsenic accumulation in rice. The International Conference on the

Biogeochemistry of Trace Elements 2017, ETH Zurich, Switzerland, July 16-20, 2017.
(3) Ma, J. F., Yamaji, N., Sasaki, A. and Ueno, D.

Uptake, distribution and detoxification of manganese in rice. XVIIIInternational Plant Nutrition Colloquium 2017, Manganese satellite meeting, Copenhagen, Denmark, Aug.
19-24, 2017.
(4) Ma, J. F. and Yamaji, N.

Molecular mechanisms for distribution of mineral elements in plants. XVIII International

Plant Nutrition Colloquium 2017, Copenhagen, Denmark, Aug. 19-24, 2017.
(5) Yokosho, K.

Identification of transporters involved in metal stress tolerance in plants. XVIII International Plant

Nutrition Colloquium 2017, Copenhagen, Denmark, Aug. 19-24, 2017.
(6) Yamaji, N., Takemoto, Y., Miyaji, T., Mitani-Ueno, N., Yoshida, K. T. and Ma, J. F.

A novel phosphate transporter

controlling grain P accumulation in rice. XVIII International Plant Nutrition Colloquium 2017, Copenhagen,Denmark, Aug. 19-24, 2017.
(7) Yokosho, K., Shao, J. F., Yamaji, N., Shen, R. F. and Ma, J. F.

Functional characterization of Nramp transporter

genes in buckwheat. XVIII International Plant Nutrition Colloquium 2017, Copenhagen, Denmark, Aug. 19-24,
2017.
(8) Che, J., Yokosho, K., Yamaji, N. and Ma, J. F.

A member of MFS is involved in phytosiderophore efflux for metal

distribution in rice. XVIII International Plant Nutrition Colloquium 2017, Copenhagen, Denmark, Aug. 19-24,
2017.
(9) Shao, J. F., Yamaji, N., Shen, R. F. and Ma, J. F.

Preferential distribution of boron to developing tissues ismediated by OsNIP3;1 localized in rice node. XVIII International Plant Nutrition Colloquium 2017,
Copenhagen, Denmark, Aug. 19-24, 2017.
(10) Lei, G. J., Yokosho, K., Yamaji, N. and Ma, J. F.

Involvement of two MATE transporters with different subcellular

localizations in buckwheat Al tolerance. XVIII International Plant Nutrition Colloquium 2017, Copenhagen,Denmark, Aug. 19-24, 2017.
(11) Ma, J. F. Transport system of mineral elements in plants under different environments. International Symposium
on Biomolecules controlling cellular function and environmental adaptation in plants, Okayama, Japan, Nov.
22, 2017.

- 31 -

植物分子生理学グループ (Group of Plant MolecularPhysiology)(1) Sasaki, T., Tsuchiya, Y., Ariyoshi, M., Ryan, P.R. and Yamamoto, Y. A chimeric ALMT-type malate transporter
shows enhanced response to aluminium and lanthanide ions. 12th Keele Meeting on Aluminium: Living in the
Aluminium Age, Vancouver, Canada, March 4-8, 2017.

(2) Yamamoto, Y., Tsuchiya, Y. and Sasaki, T. Avoidance mechanism involving ROS production in plant cells underaluminium stress. 12th Keele Meeting on Aluminium: Living in the Aluminium Age, Vancouver, Canada,
March 4-8, 2017.

(3) Kariya, K., Sasaki, T. and Yamamoto, Y. A new mechanism of aluminium-induced cell death involving the vacuolar
processing enzyme in both cultured-cell and root systems of tobacco. 12th Keele Meeting on Aluminium:
Living in the Aluminium Age, Vancouver, Canada, March 4-8, 2017.

(4) Furutani, H., Hanashiro, K., Fujii, Y., Maruyama, H., Sasaki, T. and Wasaki, J. Organic-acid transporters incluster roots of white lupin induced under phosphorus deficiency. Taiwan-Japan Plant Biology 2017,
Taipei, Taiwan, November 3-6, 2017.
(5) Nakahara, Y., Shibasaka, M., Mori, I.C., Horie, T., Kaneko, T., Terashima, I. and Katsuhara, M. Identification of
the CO2 transporters from among the plant aquaporins. Taiwan-Japan Plant Biology 2017, Taipei, Taiwan,
November 3-6, 2017.
(6) Mori, I.C., Nobukiyo, Y., Shibasaka, M., Furuichi, T. and Katsuhara, M. A barley HvCNGC2-3, is activated bycAMP and the co-presence of external Na+ and K+, and permeates Na+ and K+ non-selectively. Taiwan-Japan
Plant Biology 2017, Taipei, Taiwan, November 3-6, 2017.

環境生物ストレスユニット (Biotic Stress Unit)
植物・微生物相互作用グループ (Group of Plant-Microbe Interactions)(1) Suzuki, N. Mutualist Interactions between a Capsidless (+) ssRNA Virus and a dsRNA Virus Occurring in a
Phytopathogenic Fungus. Plenary Session Microbes in Cross-Kingdom Interactions. ASM2017 (American
Society for Microbiology 2017), New Orleans, Louisiana, U.S.A., June 1-5, 2017.
(2) Aulia, A., Andika, I. B. , Hillman, B. I. and Suzuki, N. Natural variation in antiviral RNA silencing in the chestnut
blight fungus. American Society for Virology 2017, Madison, U.S.A., June 24 -28, 2017.
(3) Andika, I. B., Jamal, A., Kondo, H. and Suzuki, N. The SAGA complex mediates the transcriptional up-regulationof antiviral RNA silencing in the chestnut blight fungus. American Society for Virology 2017, Madison,
U.S.A., June 24- 28, 2017.
(4) Hyodo, K., Suzuki, N. and Okuno, T. A role of reactive oxygen species during the replication of a plant RNA virus.
17th International Congress of Virology, Singapore, July 17-21, 2017.
(5) Lv, H.X., Sahin, N. and Tani, A. Methylophilus sp. La2-4, a lanthanide-dependent methanol-utilizing bacterium
isolated from rice rhizosphere soil. IUMS2017 (International Union of Microbiological Societies 2017),
Singapore, July 17-21, 2017.
(6) Lv, H.X. and Tani, A. Screening of lanthanides-dependent methylotrophs. International Joint Seminar Core to Core
Program A. Advanced Research Networks, Bangkok, Thailand, Aug. 26, 2017.
(7) Suzuki, N. A neo-virus-lifestyle exhibited by a (+) RNA virus hosted in an unrelated dsRNA virus. The16th Awaji
International Forum on Infection and Immunity, Awaji, Hyogo, Japan, September 5-8, 2017.
(8) Suzuki, N. A neo-virus lifestyle exhibited by a (+) ssRNA virus hosted in an unrelated dsRNA virus: taxonomic andevolutionary considerations. Virtual Event 2017 Microbiology & Immunology Virtual Conference,https://www.labroots.com/virtual-event/microbiology-2017. September13-14, 2017.

- 32 -

植物・昆虫間相互作用グループ (Group of Plant-Insect Interactions)(1) Galis, I., Shinya, T., Alamgir, K. Md., Sobhy, I., Tanabe, K., Miyake, A., Hojo, Y., Osinde, C., Sakamoto, W.,
Nakabayashi, R. and Saito, K. Omics everywhere: How about in chemical ecology. 33rd annual meeting of the
ISCE and the 9th meeting of the APACE, Kyoto, Japan, August 23-27, 2017.
(2) Teruya, M., Hayashi, K., Shinya, T., Galis, I., Nojiri, H. and Okada, K. Oxylipin signatures associated with thebiosynthesis of chemical defense compound momilactones in moss. Taiwan-Japan Plant Biology 2017, Taipei,
Taiwan, Nov. 3-6, 2017.

遺伝資源ユニット (Genetic Resources Unit)
ゲノム多様性グループ (Group of Genome Diversity)(1) Hisano, H. Identification of TFA genomic regions that confer amenability to Agrobacterium-mediatedtransformation in barley. PAGXXV2017 (Plant and Animal Genome), San Diego, CA, U.S.A., January 14-18,
2017.
(2) Hisano, H. and Sato, K. TFA Genomic Regions Confer Amenability to Agrobacterium-Mediated Transformation inBarley. PAGXXV2017 (Plant and Animal Genome), San Diego, CA, U.S.A., January 14-18, 2017.
(3) Sato, K. Exploring Triticeae genetic resources to adapt crops to climate change. 8th International Triticeae
Symposium, Wernigerode, Germany, June 12-16, 2017.

野生植物グループ (Group of Wild Plant Science)(1) Ikeda, H. Biogeographic history of alpine flora in the Japanese Archipelago. XIX International Botanical Congress,
Shenzhen, China, July 23-29, 2017.
(2) Yamashita, J. A review of the herbarium of Institute of Plant Science and Resources, Okayama University. 26th
Asian-Pacific Weed Science Society Conference, Kyoto, Japan, Sept. 19-22, 2017.

ゲノム育種ユニット (Applied Genomics Unit)
核機能分子解析グループ (Group of Nuclear Genomics)(1) Murata, M., Kashihara, K., Kanatani, A., Nagaki, K., Endo, T. and Sato, K. Identification of genes on the midget
chromosome in a common wheat with rye cytoplasm. 13th International Wheat Genetics Symposium, Tulln,
Austria, April 23-28, 2017.

ゲノム制御グループ (Group of Genome Regulation)(1) Ezaki, B., Nanba, N. and Nishiuchi, T. Aluminum stress leads an epigenetic gene-regulation in Arabidopsis-Biological functions of the AvSAMS1 gene and Suvh4 gene-. Plant Biology 2017, Hawaii, U.S.A., June 24-27,
2017.
(2) Chiou, W. Y., Rikiishi, K., Himi, E., Nishimura, H., Tsugane, K. and Maekawa, M. Genetic analysis of the large
grain mutant found in transposon-tagged lines of rice. Taiwan-Japan Plant Biology 2017, Taipei, Taiwan, Nov.
3-5, 2017.

- 33 -

次世代作物共同研究コア (Research Core for Future Crops)
作物デザイン研究チーム (Crop Design Research Team)(1) Mochida, K. Homoeolog-specific activation for heat acclimation in the allopolyploid grass Brachypodium hybridum.
The 3rd international Brachypodium Conference, Beijing, China, July 29-31, 2017.

(2) Hirayama, T., Saisho, D., Ikeda, Y., Sumi, N., Hattori, K., Hiroyuki, T., Umezaki, T. and Mochida, K. Data driven
crop design technology. Taiwan-Japan Plant Biology 2017, Taipei, Taiwan, Nov. 3-6, 2017.

エコフィジオロジー研究チーム (Ecophysiology Research Team)
イオンダイナミクス班 (Ion Dynamics Section)(1) Ooi, L. and Mori, I.C. Stomata response against sulfur dioxide. Plant Biology 2017, Honolulu, Hawaii, USA, June
24-28, 2017.

(2) Murata, Y., Munemasa, S. and Mori, I.C. Diverse stomatal signaling and the signal integration mechanism. XIX
International Botanical Congress in 2017, Shenzhen, China, June 23-29, 2017.

(3) Mori, I.C. Cyclic nucleotide gated channel in barley roots – unique characteristics of HvCNGC2-3. Plant Signaling& Behavior 2017, Matsue, Japan, June 26-30, 2017.

(4) Mori, I.C. Cyclic nucleotide gated channel in barley roots. India-Japan Joint Sakura Science Symposium, Okayama,
Japan, September 7-8, 2017.

(5) Ooi, L. and Mori, I.C. Stomata response against sulfur dioxide. Taiwan-Japan Plant Biology 2017, Taipei, Taiwan,
November 3-6, 2017.

(6) Furutani, H., Hanashiro, K., Fujii, Y., Maruyama, H., Sasaki, T. and Wasaki, J. Organic-acid transporters in clusterroots of white lupin induced under phosphorus deficiency. Taiwan-Japan Plant Biology 2017, Taipei, Taiwan,
November 3-6, 2017.

(7) Nakahara, Y., Shibasaka, M., Mori, I.C., Horie, T., Kaneko, T., Terashima, I. and Katsuhara, M. Identification of
the CO2 transporters from among the plant aquaporins. Taiwan-Japan Plant Biology 2017, Taipei, Taiwan,
November 3-6, 2017.

(8) Mori, I.C., Nobukiyo, Y., Shibasaka, M., Furuichi, T. and Katsuhara, M. A barley HvCNGC2-3, is activated bycAMP and the co-presence of external Na+ and K+, and permeates Na+ and K+ non-selectively. Taiwan-Japan
Plant Biology 2017, Taipei, Taiwan, November 3-6, 2017.

(9) Mori, I.C. Diverse roles of abscisic acid receptors in stomatal guard cells. Jilin University-Okayama University
Joint Sakura Science Workshop, Okayama, Japan, November 29-30, 2017.

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講演およびシンポジウム発表(List of Domestic Conferences and Symposia)
大気環境ストレスユニット (Atmospheric Stress Unit)
光環境適応研究グループ (Plant Light Acclimation Research Group )(1) 高見常明・大西紀和・栗田悠子・岩村青子・三村徹郎・坂本 亘

葉の老化及び栄養飢餓応答におけるオ

ルガネラヌクレアーゼ DPD1 によるオルガネラ DNA 分解の生理的意義. 第 58 回日本植物生理学会
年会, 鹿児島, 3 月 16-18 日, 2017.
(2) 西村健司・宮地孝明・石森元幸・高見常明・加藤裕介・坂本 亘

シロイヌナズナ葉緑体包膜 ABC トラ

ンスポーターの生理学的・生化学的解析. 第 58 回日本植物生理学会年会, 鹿児島, 3 月 16-18 日, 2017.
(3) ワシラ フィオナ・大西紀和・小童谷利恵・鐘ケ江弘美・高梨秀樹・藤本 優・石森元幸・岩田洋佳・草場信・堤 伸浩・坂本 亘

在来たかきび由来の RIL 集団を用いたステイグリーン QTL の解析. 第 58回日本植物生理学会年会, 鹿児島, 3 月 16-18 日, 2017.
(4) 花田裕昭・谷口（山本）幸美・西村健司・坂本 亘・古本 強・宗景（中島）ゆりC4 種 Flaveria bidentis における RETICULATA-RELATED3 の局在解析. 第 58 回日本植物生理学会年会, 鹿児島, 3 月 16-18 日,
2017.
(5) 加藤裕介・坂本 亘

リン酸化による葉緑体プロテアーゼ FtsH 機能調節の可能性. 第 58 回日本植物生理学会年会, 鹿児島, 3 月 16-18 日, 2017.
(6) 大西紀和・張 林剛・坂本 亘

葉緑体包膜の機能維持に重要な VIPP1 は GTPase 活性を示す. 第 58 回日本

植物生理学会年会, 鹿児島, 3 月 16-18 日, 2017.
(7) 冨永 淳・水谷春香・堀川大輔・中原恭俊・高見常明・坂本 亘・坂本 敦・島田裕史

イネ葉緑体タンパ

クジスルフィド酸化還元酵素は明暗下で機能する. 第 58 回日本植物生理学会年会, 鹿児島, 3 月 16-18
日, 2017.
(8) 山谷浩史・上妻 馨・中野道治・林 依子・高見常明・門田有希・奥本 裕・坂本 亘・阿部知子・草場 信

イネ stay-green 遺伝子 DCD1 の単離と機能解析. 日本育種学会第 131 回講演会, 名古屋, 3 月 28-30 日,
2017.
(9) 松島 良・久野 裕 蛍光タンパク質によるイネとオオムギの澱粉粒の可視化. 第 131 回日本育種学会, 名
古屋, 3 月 29-30 日, 2017.
(10) 横山 諒・深尾陽一朗・鹿内利治

シロイヌナズナにおいてグラナスタッキングと集光機能を最適化する

新規チラコイドタンパク質 RIQ1, RIQ2 可溶性領域の生化学解析. 第 8 回日本光合成学会年会, 瀬田, 5
月 27-28 日, 2017.
(11) 坂本莉沙・藤本 優・高梨秀樹・鐘ケ江弘美・野下浩司・小林正明・矢野健太郎・七条光年・小童谷利恵・
大西紀和・堤 伸浩・坂本 亘・岩田洋佳

QTL 解析に価値ある画像解析：ソルガム RIL 集団の葉形態を例に. 日本育種学会第 132 回講演会, 岩手, 10 月 6-9 日, 2017.
(12) 三輪幸哉・七条光年・高梨秀樹・藤本 優・鐘ケ江弘美・石森元幸・小林正明・矢野健太郎・山崎清志・
藤原 徹・米田淳一・徳永 毅・小童谷利恵・大西紀和・坂本 亘・岩田浩佳・堤 伸浩

ソルガム苞穎

毛の先端構造に関する遺伝子座の探索. 日本育種学会第 132 回講演会, 岩手, 10 月 6-9 日, 2017.
(13) 松島 良・久野 裕・藤田直子・佐藤和広

オオムギを用いた澱粉粒の形についての研究. 第12回ムギ類研究会, 京都, 12月16-17日, 2017.

- 35 -

環境応答機構研究グループ (Group of Environmental Response Systems)(1) Hirayama, T., Lei, G.J. and Ma, J.F. A novel peptide involved in the iron homeostasis under a mitochondrial defectin Arabidopsis. 第 58 回日本植物生理学会年会, 鹿児島, 3 月 16-18 日, 2017.
(2) Nishimura, N., Tsuchiya, W., Moresco, J.J., Satoh, K., Kaiwa, K., Irisa, T., Hayashi, Y., Kinoshita, T., Schroeder, J.I.,
Yates, J.R.III, Hirayama, T. and Yamazaki, T. Identification and characterization of AHG1-mediated ABA
signaling components in Arabidopsis. 第 58 回日本植物生理学会年会, 鹿児島, 3 月 16-18 日, 2017.
(3) Ikeda, Y., Pélissier, T., Bourguet, P., Becker, C., Pouch-Pélissier, M. N., Pogorelcnik, R., Weigel, D., Deragon, J. M.
and Mathieu, O. KUMONOSU protein harboring a transposon-related domain acts in gene silencing in
Arabidopsis. 第 58 回日本植物生理学会年会, 鹿児島, 3 月 16-18 日, 2017.
(4) 金澤まい・池田陽子・西浜竜一・山岡尚平・大和勝幸・河内孝之・平山隆志

ゼニゴケミトコンドリア

mRNA ポリ A 鎖長制御因子 MpAHG2 及び MpAGS1 の解析. 第 58 回日本植物生理学会年会, 鹿児島,
3 月 16-18 日, 2017.
(5) Sasaki, T., Tsuchiya, Y., Ariyoshi, M., Nakano, R., Ushijima, K., Kubo, Y., Mori, I., Higashiizumi, E., Galis, I. andYamamoto, Y. Expression and function of the ALMT-family proteins in tomato. 第 58 回日本植物生理学会
年会, 鹿児島, 3 月 16-18 日, 2017.
(6) Takebayashi, K., Kikunaga, H., Kato, M., Yokoyama, R., Nishitani, K., Watabe, H., Suda, T., Kuromori, T.,
Ishikawa, A., Horie, T., Suzui, N., Yin, Y.G., Kawachi, N., Fujimaki, S., Higuchi, K., Mori, I., Hamamoto, S.
and Uozumi, N. Circulation and accumulation of sodium and potassium in Arabidopsis athkt1 mutant. 第 58回日本植物生理学会年会, 鹿児島, 3 月 16-18 日, 2017.
(7) Yin, Y., Adachi, Y., Nakamura, Y., Munemasa, S., Mori, I. and Murata, Y. Role of ABA receptors and OST1 protein
kinase in methyl jasmonate-induced stomatal closure. 第 58 回日本植物生理学会年会, 鹿児島, 3 月 16-18
日, 2017.
(8) Yamaguchi, Y., Hanada, K., Mori, I. and Fukao, Y. Characterization of small peptides associated with Zinc
homeostasis in Arabidopsis thaliana. 第 58 回日本植物生理学会年会, 鹿児島, 3 月 16-18 日, 2017.
(9) 廣澤嘉洸・多田朱里・稲葉靖子・松浦恭和・森 泉・稲葉丈人

植物ホルモン処理が葉緑体形成阻害を示すシロイヌナズナに及ぼす影響. 第 58 回日本植物生理学会年会, 鹿児島, 3 月 16-18 日, 2017.
(10) 最相大輔・松浦恭和・池田陽子・森 泉・持田恵一・平山隆志

圃場環境下における野生オオムギと栽培

オオムギの生長段階と植物ホルモン動態の季節変動. 日本育種学会第 131 回講演会, 名古屋, 3 月
29-30 日, 2017.
(11) 金澤まい・池田陽子・西浜竜一・山岡尚平・大和勝幸・河内孝之・平山隆志

ゼニゴケの PARN はミトコ

ンドリア mRNA ポリ A 鎖長を制御する. 第 19 回日本 RNA 学会年会, 富山, 7 月 19-21 日, 2017.
(12) Ikeda, Y. The role of plant mobile domain family protein in gene silencing. 国立遺伝学研究所 研究集会: A
consortium of plant epigenetics in Japan– Second Meeting, 三島, 8 月 21 日-9 月 1 日, 2017.
(13) Ikeda, Y., Pélissier, T., Bourguet, P., Becker, C., Pouch-Pélissier, M. N., Pogorelcnik, R., Weingartner, M., Weigel,D., Deragon, J. M. and Mathieu, O. トランスポゾン関連ドメインをもつ新規遺伝子サイレンシング因子の同定. 日本植物学会第 81 回大会, 野田, 9 月 8-10 日, 2017.
(14) 間宮章仁・大塚蔵嵩・野崎 守・山本荷葉子・小林健人・八木祐介・中村崇裕・平山隆志・上田貴志・蜂谷卓士・野口 航・杉山宗隆

シロイヌナズナの側根形成初期過程において高温下で過剰な細胞分裂をもたらすミトコンドリア異常の解析. 第 81 回日本植物学会, 野田, 9 月 8-10 日, 2017.
(15) 飯田幹之・松浦恭和・森 泉・高木慎吾

アズキ上胚軸の回旋運動と植物ホルモンの分布Ⅱ. 日本植物学会第 81 回大会, 野田, 9 月 8-10 日, 2017.
(16) Ikeda, Y., Pélissier, T., Bourguet, P., Becker, C., Pouch-Pélissier, M. N., Pogorelcnik, R., Weingartner, M., Weigel,D., Deragon, J. M. and Mathieu, O. トランスポゾン関連ドメインをもつ新規遺伝子サイレンシング因子の同定. 日本遺伝学会第 89 回大会, 岡山, 9 月 13-16 日, 2017.
(17) 鷲見典克・服部公央亮・最相大輔・田口 亮・保黒政大・平山隆志・梅崎太造

多視点カメラを用いたオ

オムギ生長度合いの推定. Vision Engineering Workshop 2017, 12 月 7-8 日, 横浜, 2017.

- 36 -

土壌環境ストレスユニット (Soil Stress Unit)
植物ストレス学グループ (Group of Plant Stress Physiology)(1)Che, J., Yamaji, N. and Ma, J. F. OsPHO1;2 is also involved in intervascular transfer of phosphorus in rice node. 第 58 回
日本植物生理学会年会, 鹿児島, 3 月 16-18 日, 2017.

(2)

Lei, G. J., Yamaji, N. and Ma, J. F. Role of two genes encoding metallothionein in distribution of metals in rice. 第 58 回日
本植物生理学会年会, 鹿児島, 3 月 16-18 日, 2017.

(3)Youngsook Lee, Y., Ma, J. F., Martinoia1, E. and Song, W-Y. Transporters for vacuolar sequestration of toxic metals andarsenic. Simposium ‘Dynamic Vacuoles in Plants 2017’, 第 58 回日本植物生理学会年会, 鹿児島, 3 月 16-18 日,
2017.

(4)

山地直樹・柏野（藤井）美帆・横正健剛・馬 建鋒 イネ・オオムギ・ライムギの根圏 pH 応答性の比較トラン(5)

横正健剛・邵 継鋒・山地直樹・沈 仁芳・馬 建鋒 ソバの Nramp ファミリー遺伝子の機能解析．第 58 回日

スクリプトーム解析．第 58 回日本植物生理学会年会, 鹿児島, 3 月 16-18 日, 2017.
本植物生理学会年会, 鹿児島, 3 月 16-18 日, 2017.
(6)

平山隆志・雷 貴傑・馬 建鋒 シロイヌナズナのミトコンドリア機能異常変異株における鉄欠乏応答に関与す(7)

山地直樹 コメのミネラル蓄積を左右する節の輸送制御．シンポジウム 『いま注目のトランスポー

るペプチド．第 58 回日本植物生理学会年会, 鹿児島, 3 月 16-18 日, 2017.

ター研究①』，第 12 回トランスポーター研究会年会，仙台，7 月 8-9 日, 2017.
(8)

Lei, G. J., Yokosho, K.., Yamaji, N. and Ma, J. F. Two MATE transporters with different subcellular localization are(9)

Shao, J. F., Yamaji, N. and Ma, J. F. Preferential distribution of boron to developing tissues is mediated by OsNIP3;1

involved in Al tolerance in buckwheat. 第 12 回トランスポーター研究会年会，仙台，7 月 8-9 日, 2017.
localized in rice node. 第 12 回トランスポーター研究会年会，仙台，7 月 8-9 日, 2017.
(10) Che, J., Yokosho, K., Yamaji, N. and Ma, J. F. Implication of two genes encoding a bacterial-type ATP-binding cassettetransporter in Al tolerance in buckwheat. 第 12 回トランスポーター研究会年会，仙台，7 月 8-9 日, 2017.
(11) 馬 建鋒 ケイ素の人への健康作用についての考察．シンポジウムⅢ 肥料・ミネラルと人の健康．日本土壌肥料学会 2017 年度仙台大会，仙台，9 月 5-7 日，2017.
(12) 馬 建鋒・柏野美帆・山地直樹 オオムギの新規アルミニウム耐性制御機構．日本土壌肥料学会 2017 年度仙台
大会，仙台，9 月 5-7 日, 2017.
(13) 山地直樹・馬 建鋒 イネのケイ酸輸送体 Lsi6 の節における著しい高発現は組換えプロモーターでは再現できない．日本土壌肥料学会 2017 年度仙台大会，仙台，9 月 5-7 日，2017.
(14) 横正健剛・邵 継鋒・山地直樹・馬 建鋒 ソバの Nramp ファミリー遺伝子の機能解析．日本土壌肥料学会 2017年度仙台大会，仙台，9 月 5-7 日, 2017.
(15) Che, J., Yamaji, N. and Ma, J. F. Functional characterization of genes involved in P distribution in rice node. 日本土壌肥料学会 2017 年度仙台大会，仙台，9 月 5-7 日, 2017.
(16) Lei, G. J., Wu, D. Z., Sato, K. and Ma, J. F. Mapping of a gene responsible for Cd tolerance in barley. 日本土壌肥料学会
2017 年度仙台大会，仙台，9 月 5-7 日, 2017.
(17) 馬 建鋒 環境と栄養に資する植物のミネラル輸送．シンポジウム「豊かな未来を創造する農芸化学－西からの発信－」，日本農芸化学会関西・中四国・西日本支部 2017 年度合同大阪大会，大阪，9 月 21-22 日, 2017.
(18) Shao, J. F., Yamaji, N. and Ma, J. F. Molecular mechanisms for preferential distribution of boron in rice. 2017 年度日本土壌肥料学会関西支部会, 橿原（奈良）, 12 月 7 日, 2017.
(19) 常光優太・宮崎 彰・山地直樹・馬 建鋒・加藤伸一郎・岩崎貢三・上野大勢 トランスゴルジ局在型 MTP11はイネのマンガン耐性に関与する．2017 年度日本土壌肥料学会関西支部会, 橿原（奈良）, 12 月 7 日, 2017.

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植物分子生理学グループ (Group of Plant Molecular Physiology)(1) 且原真木 内膜系におけるアクアポリンの輸送基質と機能. 第 19 回植物オルガネラワークショップ, 鹿
児島, 3 月 15 日, 2017.

(2) 宇都木繁子・柴坂三根夫・且原真木 種子におけるオオムギ液胞膜型アクアポリン（HvTIPs）の相互作用と水輸送活性. 第 58 回日本植物生理学会, 鹿児島, 3 月 16-18 日, 2017.

(3) Sasaki, T., Tsuchiya, Y., Ariyoshi, M., Nakano, R., Ushijima, K., Kubo, Y., Mori, I.C., Higashiizumi, E., Galis, I.
and Yamamoto, Y. Expression and function of the ALMT-family proteins in tomato. 第 58 回日本植物生理学会, 鹿児島, 3 月 16-18 日, 2017.

(4) Kariya, K., Sasaki, T. and Yamamoto, Y. VPE is an executor of aluminum-induced cell death in cultured tobacco
cells. 第 58 回日本植物生理学会, 鹿児島, 3 月 16-18 日, 2017.

(5) 野澤彰・名樂仁・松井司・井上寛之・佐々木孝行・山本洋子・戸澤譲・有村源一郎・根本圭一郎・澤崎達也

シロイヌナズナ PAPS 輸送体 PAPST2 の解析. 第 12 回トランスポーター研究会年会, 仙台, 7 月 8-9日, 2017.

(6) 山本洋子・苅谷耕輝・土屋善幸・佐々木孝行 アルミニウムの毒性ならびに耐性機構－植物培養細胞を用いたアプローチ－. 第 28 回日本微量元素学会学術集会, 仙台, 7 月 29-30 日, 2017.

(7) 土屋善幸・苅谷耕輝・佐々木孝行・山本洋子 タバコ培養細胞におけるアルミニウム耐性と ERF（エチレン応答因子）ファミリー転写調節因子との関係.

日本土壌肥料学会, 仙台, 9 月 5-7 日, 2017.

(8) 苅谷耕輝・土屋善幸・佐々木孝行・山本洋子 アルミニウムによるタバコの根伸長阻害におけるスクロー
ス輸送体遺伝子の関わり. 日本土壌肥料学会, 仙台, 9 月 5-7 日, 2017.

(9) 大島七海・且原真木・三村徹郎・大西美輪・瀬戸口浩彰 ハマダイコンにおけるセシウム蓄積特性の解析.
日本植物学会第 81 回大会, 野田, 9 月 8-10 日, 2017.

(10) 妹川陽香・且原真木・瀬戸口浩彰 ダイコン野生種ハマダイコンにおける海岸生-琵琶湖陸封生の間での耐塩性分化. 日本植物学会第 81 回大会, 野田, 9 月 8-10 日, 2017.

環境生物ストレスユニット (Biotic Stress Unit)
植物・微生物相互作用グループ (Group of Plant-Microbe Interactions)
(1) 谷

明生

抗酸化性アミノ酸エルゴチオネインの微生物生産. 化粧品開発展, 東京, 1 月 25 日, 2017.

(2) 菅沼宗矢・王 倫・日比野歩美・三井亮司・谷 明生・海老原章郎・早川享志・中川智行

根粒菌 Bradyrhizobium

diazoefficiens 由来レアアース依存的メタノール脱水素酵素の酵素科学的性質. 日本農芸化学会 2017年度大会, 京都, 3 月 17 日, 2017.
(3) 伊賀俊貴・加藤純一・谷明生

Methylobacterium 属細菌におけるメタノール走化性センサーの同定. 日本農芸化学会 2017 年度大会, 京都, 3 月 17 日, 2017.
(4) Lv, H.X. and Tani, A.

Genomic characterization of a new methylotroph, Oharaeibacter diazotrophicus SM30. 日

本農芸化学会 2017 年度大会, 京都, 3 月 17 日, 2017.
(5) 近藤秀樹・久野 昌・千葉壮太郎・鈴木信弘

アカクローバーうどんこ病菌より見いだされた新規トティ

ウイルス. 平成 29 年度日本植物病理学会大会，盛岡，4 月 26-28 日, 2017．
(6) Aulia, A., Andika, I. B. , Hillman, B. I. and Suzuki, N. Comparison of two related mycoreoviruses reveals naturalvariation of antiviral RNA silencing in the chestnut blight fungus. The Annual Meeting of the JapanesePhytopathological Society. Morioka, April 26-28, 2017.
(7) 水谷行善・須賀晴久・鈴木信弘・千葉壮太郎

Fusarium boothii BL13 分離株に存在する 3 種の dsRNA 成

分の生物学的性状. H29 年度日本植物病理学会大会，盛岡，4 月 26 -28 日, 2017．

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(8) Aulia, A., Andika, I. B. , Hillman, B. I. and Suzuki, N. Comparison of the behaviors of mycoreovirus 1 and 2 in thefungal host, Cryphonectria parasitica, reveals natural variation in anbtiviral RNAi. 32nd Annual Meeting of the
Chugoku/Shikoku Regional Virology Society, Kurashiki, June 10-11, 2017.
(9) Shahi, S., Hyodo, K., Chiba. S., Hillman. B. I. and Suzuki, N. Properties of a mitochondrially replicating
positive-sense RNA virus isolated from a filamentous ascomycete, Cryphonectria parasitica. 32nd Annual
Meeting of the Chugoku/Shikoku Regional Virology Society, Kurashiki, June 10-11, 2017.
(10) 鈴木信弘

岡山大学先端研究講座 11 ネオウイルス学: ウイルスと生きる.

(11) 近藤秀樹・鈴木信弘

岡山，6 月 17 日, 2017．

植物ラブドウイルスの分節化と進化. シンポジウム：多様なウイルスと進化の世界.

日本進化学会第 17 回大会，京都，8 月 24-26 日, 2017.
(12) 小松あき子・近藤秀樹・佐藤真之・鈴木信弘・藤森文啓

温度依存的に蓄積する Grifola frondosa RNA virus1(GfRV1) によるマイタケ宿主遺伝子群の発現解析. 環境微生物系学会合同大会 2017，仙台, 8 月 29-31
日, 2017.
(13) 鈴木信弘

ウイルスもまた宿を借りる:驚くべき菌類ウイルスの奸智

シンポジウム「環境ウイルスたちの多様な存在様態 -かつてないウイルス研究がここに集う-」環境微生物系学会合同大会，仙台，8月2931日, 2017．
(14) 谷 明生 植物共生メタノール資化性細菌 Methylobacterium 属細菌におけるエルゴチオネイン生産と役割.
公募シンポ６：硫黄循環に寄与する微生物と硫黄化合物が持つ新規な機能. 環境微生物系学会合同大会, 仙台, 8 月 29-31 日, 2017.
(15) 吉川友理・一小路貴士・中川智行・谷 明生・三井亮司

Methylobacterium extorquens AM1 のランタノイド

濃度に応答したメタノールデヒドロゲナーゼプロモーターのレポーター遺伝子を用いた発現解析.
日本農芸化学会 2017 年度合同大阪大会, 大阪, 9 月 21-22 日, 2017.
(16) Suzuki, N. A neo-virus-lifestyle: a positive strand RNA virus hosted in an unrelated double-stranded RNA virus. 65th
Annual Meeting of the Japanese Society for Virology, Osaka, October 24-26, 2017.
(17) Aulia, A., Andika, I. B., Hillman, B. I. and Suzuki, N. RNA silencing is the determinant of host specificity of
mycoreoviruses in the chestnut blight fungus. 65th Annual Meeting of the Japanese Society for Virology, Osaka,
October 24-26, 2017.
(18) 鈴木信弘

菌類ウイルスの多様性と宿主とのせめぎ合い. アドバンストセミナーシリーズ, 大阪大学微生物病研究所. Diversity of virus/fungus hosts and their interplays. Advanced Seminar Series on Microbiology
and Immunology. Research Institute for Microbial Diseases. Osaka, December 8, 2017.
(19) Kondo, H. Cross-kingdom viral infection between plants and insects: An evolutionary insight into rhabdoviruses
Africa Day 2017, Okayama, December 14, 2017.
(20) 田原 緑・鈴木信弘・森山裕充・福原敏行

植物と菌類の siRNA 生成酵素ダイサーの酵素活性比較. 第 7

回植物 RNA 研究ネットワークシンポジウム, 国立遺伝学研究所，12 月 14 日, 2017.

植物・昆虫間相互作用グループ (Group of Plant-Insect Interactions)(1) 新屋友規・北條優子・兵頭 究・晝間 敬・西條雄介・Galis Ivan

イネの傷害誘導性ペプチド OsPep3 は植食性昆虫エリシター応答を増強する. 第 58 回日本植物生理学会年会, 鹿児島, 3 月 16-18 日, 2017.
(2) Sasaki, T., Tsuchiya, Y., Ariyoshi, M., Nakano, R., Ushijima, K., Kubo, Y., Mori, I.C., Higashiizumi, E., Galis, I.
and Yamamoto Y.

Expression and function of the ALMT-family proteins in tomato. 第 58 回日本植物生理学会年会, 鹿児島, 3 月 16-18 日, 2017.
(3) Galis, I., Osinde, C., Tsutsumi, N., Iwata, H., Kanegae, H., Fujimoto, M., Takanashi, H., Ishimori, M., Murage, H.
and Sakamoto, W.

Assessing the sorghum variability in resistance to insect pests. 第 58 回日本植物生理学

会年会, 鹿児島, 3 月 16-18 日, 2017

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(4) 今仲優布・イヴァンガリス・北條優子・新屋友規・大西浩平・曳地康史・木場章範

Sucrose non-Fermenting

Related Kinase 1 はホスファチジン酸を介した植物免疫シグナル伝達に関与する. 第 58 回日本植物生理学会年会,鹿児島, 3 月 16-18 日, 2017.
(5) 茂手木敦史・宮本皓司・山根久和・新屋友規・Galis Ivan・岡田憲典・野尻秀昭

イネのジャスモン酸誘導性転写因子 RERJ1 によるリナロール生産制御メカニズムの解明. 日本農芸化学会 2017 年度大会,
京都, 3 月 17-20 日, 2017.
(6) 照屋美優・藤原 薫・宮本皓司・新屋友規・Galis Ivan・山根久和・林謙一郎、野尻秀昭・岡田憲典

ハイゴケにおける化学防御物質モミラクトン生合成制御機構の解明. 日本農芸化学会 2017 年度大会, 京
都, 3 月 17-20 日, 2017.
(7) 住岡裕香・山崎廉予・Galis Ivan・北条優子・新屋友規・有村源一郎

ハスモンヨトウ唾液内共生菌のシ

ロイヌナズナ誘導防御における作用メカニズムの解明. 第 61 回日本応用動物昆虫学会大会, 小金井,
3 月 27-29 日, 2017.
(8) 森田美紀・山崎廉予・Galis Ivan・北条優子・新屋友規・有村源一郎

異なる植食者の唾液内共生菌が影響する植物—植食者間相互作用. 第 61 回日本応用動物昆虫学会大会, 小金井, 3 月 27-29 日, 2017.
(9) 叶 文秀・新屋友規・木下俊則・賀来華江・渋谷直人・村田芳行

シロイヌナズナ孔辺細胞におけるキチン信号伝達. 日本植物学会第 81 回大会, 野田, 9 月 8-10 日, 2017.
(10) 照屋美優・藤原 薫・宮本皓司・山根久和・新屋友規・Galis Ivan・白石太郎・葛山智久・林謙一郎・野尻
秀昭・岡田憲典

蘚類ハイゴケのモミラクトン生産制御に関与するオキシリピン. 日本農芸化学会関東支部 2017 年度大会, つくば, 9 月 2 日, 2017.
(11) 照屋美優・藤原 薫・宮本皓司・山根久和・新屋友規・Galis Ivan・林謙一郎・野尻秀昭・岡田憲典

蘚類ハイゴケにおける化学防御物質モミラクトンの生産制御をになうオキシリピンの探索. 第 52 回植物
化学調節学大会, 鹿児島, 10 月 27-29 日, 2017.
(12) Andama, J.B., Osinde, C. and Galis, I. NERICA rice and herbivores: Anything to worry about? Africa Day 2017,
Okayama, Dec. 14, 2017.

遺伝資源ユニット (Genetic Resources Unit)
ゲノム多様性グループ(Group of Genome Diversity)(1) 岡田香織・加藤常夫・佐藤和広・中村信吾・生井 潔

オオムギ種子休眠性 DNA マーカーの簡易検出法．

日本育種学会第 131 回講演会, 名古屋, 3 月 29-30 日, 2017.
(2) 久野 裕・宗森広美・元井由加・新海典夫・瀬々 潤・豊田 敦・佐藤和広

オオムギの形質転換効率に関わる遺伝子単離に向けた DNA マーカー開発．日本育種学会第 131 回講演会, 名古屋, 3 月 29-30 日,
2017.
(3) 久野 裕

品種の壁を越える: オオムギの形質転換に必要なゲノム領域の探索と利用．第 35 回日本植物細胞分子生物学会（さいたま）大会 シンポジウム, さいたま, 8 月 29-31 日, 2017.
(4) 佐藤和広

オオムギの変わりものと私たちの食卓．日本遺伝学会公開市民講座, 岡山, 9 月 16 日, 2017.

(5) 石井 誠・佐藤和広・持田恵一・高萩航太・井上小槙

オオムギ遺伝資源における圃場出穂期の年次変動．

日本育種学会第 132 回講演会, 盛岡, 10 月 7-8 日, 2017.
(6) 久野 裕・宗森広美・西村秀希・佐藤和広

Baby boom1 ならびに Wuschel2 に制御されるオオムギ遺伝子の単離．日本育種学会第 132 回講演会, 盛岡, 10 月 7-8 日, 2017.
(7) 神谷容子・安倍史高・久野 裕・佐藤和広・三上雅史・遠藤真咲・川浦香奈子

パンコムギにおける

CRISPR/Cas9 システムを用いたゲノム編集用ターゲット配列の評価系の確立．日本育種学会第 132回講演会, 盛岡, 10 月 7-8 日, 2017.

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(8) 笹沼恒男・齋藤美帆・田中裕之・佐藤和広・朱 明婧・龍 春林

中国青海省チベット高原で採集した野生コムギ連遺伝資源の遺伝学的特徴付け．日本育種学会第 132 回講演会, 盛岡, 10 月 7-8 日, 2017.
(9) 最相大輔・高萩航太郎・持田恵一・半田裕一・佐藤和広

醸造品種の農業形質改良に向けた日本の在来品

種「早木曽 2 号」の染色体部分置換系統群の育成．日本育種学会第 132 回講演会, 盛岡, 10 月 7-8 日,2017.
(10) 半田裕一・最相大輔

日長変化に反応するオオムギ出穂性 QTL の検出．日本育種学会第 132 回講演会，盛岡, 10 月 7-8 日, 2017.
(11) 井藤 純・最相大輔・辻 寛之

圃場環境下における野生オオムギと栽培オオムギのメリステムの成長過程．日本育種学会第 132 回講演会，盛岡, 10 月 7-8 日, 2017.
(12) 佐藤和広・小松田隆夫

Structure and function of a major seed dormancy gene in barley. 日本育種学会第 132回講演会ワークショップ, 盛岡, 10 月 7-8 日, 2017.
(13) 飯牟礼 隆・佐藤和広

ビールの泡品質を良くするためのプロテオーム解析とそのビール大麦育種への応用．日本醸造学会講演会, 東京, 10 月 11-12 日, 2017.
(14) 久野 裕・宗森広美・元井由加・佐藤和広

オオムギの形質転換効率に関する遺伝学的解析．第 9 回中国地域育種談話，東広島, 11 月 25-26 日, 2017.
(15) 久野 裕・Patrick M. Hayes・佐藤和広

オオムギの形質転換能に関わるゲノム領域の同定．分子生物学会,

神戸, 12 月 6-9 日, 2017.
(16) 佐藤和広

実験用オオムギの栽培．第 12 回ムギ類研究会, 京都, 12 月 16-17 日, 2017.

(17) 久野 裕

品種の壁を越える：オオムギの形質転換効率に関わる遺伝子座の同定とその利用．第 12 回ムギ類研究会, 京都, 12 月 16-17 日, 2017.
(18) 中村俊樹・齋藤美香・田中 剛・佐藤和広・Patricia Vrinten

精麦特性向上に寄与する大麦破砕澱粉粒（far）

形質 －変異遺伝子同定と選抜マーカー開発．第 12 回ムギ類研究会, 京都, 12 月 16-17 日, 2017.
(19) 道川麻美・吉田健太郎・佐藤和広・宅見薫雄

RNA-seq による一粒系コムギのゲノムワイド多型の検出．

第 12 回ムギ類研究会, 京都, 12 月 16-17 日, 2017.
(20) 三木祐香・吉田健太郎・佐藤和広・宅見薫雄

RNA-seq による Sitopsis 節 5 種のゲノムワイド多型の検出．第 12 回ムギ類研究会, 京都, 12 月 16-17 日, 2017.
(21) 松島 良・久野 裕・藤田直子・佐藤和広

オオムギを用いた澱粉粒の形についての研究．第 12 回ムギ類研究会, 京都, 12 月 16-17 日, 2017.
(22) 笠澄 望・吉田健太郎・佐藤和広・宅見薫雄

コムギ準等質遺伝子系統を用いた RNA-seq による Ne1 とNe2 染色体領域の検出．第 12 回ムギ類研究会, 京都, 12 月 16-17 日, 2017.
(23) 最相大輔

東アジア地域適応を紐解く Nested Association Mapping (NAM)集団構築．第 12 回ムギ類研究会,

京都, 12 月 16-17 日, 2017.

遺伝資源機能解析グループ (Group of Genetic Resources and Functions)(1)

武田 真・大久保和男

オオムギ１４条自然突然変異体の遺伝解析. 日本育種学会，名古屋，3 月 29 日, 2017.

育種学研究 19 (別 1) 103.

野生植物グループ (Group of Wild Plant Science)(1) 池田 啓・Valentin Yakubov・Vyacheslav Barkalov・瀬戸口浩彰

高山植物アオノツガザクラ（Phyllodoce

aleutica）の系統地理：日本列島に起源した可能性のある分布形成の歴史. 日本植物分類学会第 16 回
大会, 京都, 3 月 11 日, 2017.

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ゲノム育種ユニット (Applied Genomics Unit)
ゲノム制御グループ (Group of Genome Regulation)(1) 江崎文一・南葉典恵・西内 巧

S-アデノシルメチオニン合成酵素（SAMS）遺伝子による Al ストレス耐性の付与とエピジェネティックな発現制御の促進について．日本植物生理学会年会, 鹿児島, 3 月
16-18 日, 2017.
(2) 宇都木繁子・柴坂三根男・且原真木

種子におけるオオムギ液胞膜型アクアポリン(HvTIPs)の相互作用と水輸送活性．第 58 回日本植物生理学会年会, 鹿児島, 3 月 16-18 日, 2017.
(3) Chiou, W. Y., Rikiishi, K., Himi, E., Nishimura, H., Tsugane, K. and Maekawa, M. Genetic analysis of a large grainmutant found in transposon-tagged lines in rice.日本育種学会第 131 回講演会, 名古屋, 3 月 29-30 日, 2017.
(4) 前川雅彦

イネの内在性 DNA トランスポゾン、nDart の育種的利用. 第８回北海道イネ研究会, 札幌, 6 月

30 日, 2017.
(5) 杉本 学・田中基博・Igor, I.・Rushan, S.・Gusev, O.

紫外線で誘導されるミナトカモジグサ由来 NUDX 遺伝子の機能解析．日本宇宙生物科学会第 31 回大会，前橋，9 月 21-22 日, 2017.
(6) 氷見英子・栗原志保・安倍史高・前川雅彦

Tamyb10 遺伝子の導入がコムギ種子休眠に与える影響について. 日本育種学会第 132 回講演会, 岩手, 10 月 7-8 日, 2017.
(7) 西村秀希・氷見英子・栂根一夫・前川雅彦

イネの 5azaC 処理による DNA トランスポゾン、Dart の活性化. 日本育種学会第 132 回講演会, 岩手, 10 月 7-8 日, 2017.
(8) Tun, S., Gichuhi, E. and Maekawa, M. QTL analysis for yield traits in F2 of a cross between Oryza longistaminata
introgression line pLia-4 and Basmati under low input conditions. 日本育種学会第 132 回講演会, 岩手, 10
月 7-8 日, 2017.
(9) 力石和英・西村秀希・前川雅彦

RNA-seq によるコムギ種子休眠性低下突然変異系統 RSD32 の遺伝解析．

日本育種学会第 132 回講演会．盛岡, 10 月 7-8 日, 2017.
(10) 杉本 学・田中英彦・村上允唯

オオムギ由来Ｌ-メチオニンγ-リアーゼの構造と機能解析．第 40 回日

本分子生物学会，神戸, 12 月 6-9 日, 2017.
(11) 氷見英子

Tamyb10 遺伝子の導入によるコムギ種子休眠の変化. 第 21 回穂発芽研究会研究会, つくば, 12

月 18-19 日, 2017.
(12) 力石和英

概日時計遺伝子はコムギの種子休眠性を制御するのか？

第 21 回穂発芽研究会, つくば, 12 月

18-19 日, 2017.

次世代作物共同研究コア (Research Core for Future Crops)
作物デザイン研究チーム (Crop Design Research Team)(1) 石井 誠・佐藤和広・持田恵一・高萩航太郎・ 井上小槙 オオムギ遺伝資源における圃場出穂期の年次変動要因．第 132 回日本育種学会講演会, 岩手, 10 月 6-9 日, 2017.

(2) 最相大輔・高萩航太郎・持田恵一・半田裕一・佐藤和広 醸造品種の農業形質改良に向けた日本の在来品
種「早木曽 2 号」の染色体部分置換系統群の育成．第 132 回日本育種学会講演会, 岩手, 10 月 6-9 日,
2017.

(3) 持田恵一 植物科学とデータ科学を融合したバイオマス増産研究．第 42 回近畿バイオ・バイオマスイノ
ベーション研究会, 大阪, 12 月 15 日, 2017.

(4) 持田恵一 Data science for crop research and agriculture. 研究集会「Developments of Data Science and its
applications to real world」, 沖縄, 12 月 13-14 日, 2017.

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エコフィジオロジー研究チーム (Ecophysiology Research Team)
イオンダイナミクス班 (Ion Dynamics Section)(1) 野澤 彰・名樂 仁・松井 司・井上寛之・佐々木孝行・山本洋子・戸澤 譲・有村源一郎・根本圭一郎・澤崎達也

シロイヌナズナ PAPS 輸送体 PAPST2 の解析. 第 12 回トランスポーター研究会年会, 仙台, 7

月 8-9 日, 2017.
(2) 山本洋子・苅谷耕輝・土屋善幸・佐々木孝行

アルミニウムの毒性ならびに耐性機構－植物培養細胞を用いたアプローチ－. 第 28 回日本微量元素学会学術集会, 仙台, 7 月 29-30 日, 2017.
(3) 土屋善幸・苅谷耕輝・佐々木孝行・山本洋子

タバコ培養細胞におけるアルミニウム耐性と ERF（エチレン応答因子）ファミリー転写調節因子との関係.
(4) 苅谷耕輝・土屋善幸・佐々木孝行・山本洋子

日本土壌肥料学会, 仙台, 9 月 5-7 日, 2017.

アルミニウムによるタバコの根伸長阻害におけるスクロー

ス輸送体遺伝子の関わり. 日本土壌肥料学会, 仙台, 9 月 5-7 日, 2017.
(5) 大島七海・且原真木・三村徹郎・大西美輪・瀬戸口浩彰

ハマダイコンにおけるセシウム蓄積特性の解析.

日本植物学会第 81 回大会, 野田, 9 月 8-10 日, 2017.
(6) 妹川陽香・且原真木・瀬戸口浩彰

ダイコン野生種ハマダイコンにおける海岸生-琵琶湖陸封生の間での耐塩性分化. 日本植物学会第 81 回大会, 野田, 9 月 8-10 日, 2017.

- 43 -

研究所員が主催したシンポジウム等(List of Symposium Superintended by the Member of Institute)

33rd IPSR International Symposium and 9th Symposium on Plant Stress Sciences－Plant Science for sustainable crop production and a friendly environment－
第33回資源植物科学シンポジウム及び第９回植物ストレス科学研究シンポジウム
March 6-7, 2017
Kurashiki Geibunkan
Organizer: Jian Feng Ma (IPSR, Okayama University)
March 6
1. Chemical defense tradeoffs in maize-insect interactions may limit breeding for enhanced resistance
Jander, G. (Boyce Thompson Institute, Cornell University)
2. Identification and utilization of brown planthopper resistance genes in rice
Liu, Y. (Nanjing Agriculture University)
3. Alleviating stress in plants through improvement of silicon absorption
Belanger, R. R. (Universite Laval)
4. Towards sustainable production of micronutrient-optimized crops
Clemens, S. (University of Bayreuth)
5. Novel phosphate transporter in rice node and grain P control（イネ節の新規リン酸輸送体とコメのリンの制御）
Yamaji, N. (IPSR, Okayama University)
6. Barley improvement for human-friendly agriculture, with emphases on awn length and dietary fiber content（人に優しい農業用のオオムギ品種改良：芒長と食物繊維含量を中心として）
Taketa, S. (IPSR, Okayama University)
7. East Asia is a nursery for Pre-Harvest Sprouting (PHS) tolerance genes in wheat and barley（東アジアの環境が育んだ麦の穂発芽耐性遺伝子）
Nakamura, S. (Institute of Crop Science, NARO)
March 7
8. Viroids, minimal non-protein-coding genomes: how they infect and cause diseases in their host plants
Flores, R. (Instituto de Biologia Molecular y Celular de Plantas (UPV-CSIC))
9. Epigenetic response to various environments in plants and its mechanism（植物における環境に対するエピジェネティックな応答とそのメカニズム）
Ikeda, Y. (IPSR, Okayama University)
10. Breeding of high-yield and superior-quality rice through rational design
Qian, Q. (China National Rice Research Institute)
11. Crop design based on life cycle datasets toward sustainable agriculture（持続的な農業生産を目指した作物のライフログデータに基づく作物設計）
Mochida, K. (RIKEN / IPSR, Okayama University)- 44 -

The 29th Fungal Genetics Conference
March 14-19, 2017
Asilomar Conference Center, Pacific Grove, CA, USA
Organizer: Nobuhiro Suzuki (IPSR, Okayama University)
Convener of Plenary Session II: Applied Mycology: Superpowers of Fungal Heroes and Villains

1. Plant biomass conversion by fungi: a highly diverse and complex process
Vries, R. (Utrecht University)
2. Resistance to antifungal drugs in fungal pathogens
Sanglard, D. (University of Lausanne and Hospital Center)
3. Malassezia -what´s the turning point from commensal to pathogen?
Scheynius, A. (Karolinska Institutet)
4. Fusarium fujikuroi - a treasure box for new secondary metabolites and non-canonical regulatory mechanisms
Tudzynski, B. (Institute of Biology & Biotechnology of Plants, University Münster)
5. Symbiosis between a bacterial endophyte and the ancient African crop finger millet results in dramatic trapping andkilling of the fungal pathogen Fusarium graminearum
Raizada, M. (University of Guelph)

第19回 植物オルガネラワークショップ
植物オルガネラの進化と機能、そして可能性

Workshop supported by Joint Usage/Research Center－Plant Epigenetics: From Emerging Phenomena to Novel Molecular Events－
日程：平成29年3月15日
場所：鹿児島大学
オーガナイザー：蘭 正人（鹿児島大学）
・小保方潤一（京都府立大学）・加藤裕介（岡山大学・植物研）
・
河野重行（東京大学）
・楠見健介（九州大学）・小林裕和（静岡県立大学）
・西村芳樹（京都大学）・
林田信明（信州大学）
・宮沢 豊（山形大学）
セッション１：植物オルガネラの成立と機能化
１．光合成と窒素固定の酸素パラドクスを統御する低酸素適応機構
藤田祐一・山川壽伯・辻本良真（名古屋大学）
２．真核光合成生物はどのように生まれたか？
合成有殻アメーバのゲノム解析から見えてきた一次細胞内共生進化の初期プロセス
松尾充啓1・潟端 篤1・水口洋平2・野口英樹2・豊田 敦2・藤山秋佐夫2・鈴木 穣3・佐藤壮一郎1・中山卓郎4・神川龍馬5・野村真未4・稲垣祐司4・石田健一郎4・小保方潤一1（1京都府立大学・2国立
遺伝学研究所・3東京大学・4筑波大学・5京都大学）
３．コケ植物の葉緑体を取り囲むペプチドグリカンと葉緑体分裂
高野博嘉・武智克彰（熊本大学）- 45 -

セッション２：オルガネラ制御とホメオスタシス
１．過剰な光を受け流す光合成超分子複合体
得津隆太郎（基礎生物学研究所）
２．オルガネラ機能を操るレドックス制御ネットワーク
吉田啓亮・久堀 徹（東京工業大学）
３．内膜系におけるアクアポリンの輸送基質と機能
且原真木（岡山大学・植物研）
特別講演
藻類バイオは何をもたらすか：リン、デンプン、オイル、オートファジー
河野重行（東京大学）

2017 IPSR International Forum on Plant Stress Science for Young Researchers
August 8-10, 2017
IPSR, Okayama University
Organizers: Jian Feng Ma and Kazuhiro Sato (IPSR, Okayama University)
August 8
1. Barley genetic diversity to improve stress tolerance
Sato, K. (IPSR, Okayama University)
2. Development of an environmentally friendly system to reduce the use of phosphorus fertilizers and herbicides
Herrera-Estrella, L. (Cinvestav Mexico)
3. Let’s present our research work on Plant Stress - Part I
4. Let’s present our research work on Plant Stress - Part II
August 9
5. Let’s present our research work on Plant Stress - Part III
6. Let’s present our research work on Plant Stress - Part IV
7. Let’s present our research work on Plant Stress - Part V
8. Let’s present our research work on Plant Stress - Part VI
9. Let’s talk about Plant Stress -What kind of plants do you dream to have in future? August 10
10. Transport system of mineral elements in rice
Ma, J. F. (IPSR, Okayama University)
11. Unraveling the regulatory networks controlling desiccation tolerance in Arabidopsis seeds
Herrera-Estrella, L. (Cinvestav Mexico)- 46 -

平成 29 年度岡山大学資源植物科学研究所公開講座プログラム（倉敷市大学連携講座）

日程：平成 29 年 9 月 30 日
場所：岡山大学資源植物科学研究所
１．植物のストレス克服法～ミネラルストレスと戦う植物の戦略～
横正健剛（岡山大学・植物研）
２．世界のオオムギと私たちの食卓
佐藤和広（岡山大学・植物研）

Barley and wheat orthologous genes, their structure, function and application
October 7, 2017
Iwate University, Annual meeting of Japanese Society of Breeding
Organizers: Takao Komatsuda (Institute of Crop Science, NARO) and Kazuhiro Sato (IPSR, Okayama University)

1.
2.
3.
4.

5.
6.

7.
8.
9.

Wild emmer genome architecture and diversity elucidate wheat evolution and domestication
Assaf Distelfeld (The Institute for Cereal Crops Improvement, Tel Aviv University)
Structure and function of a major seed dormancy gene in barley
Kazuhiro Sato1, Takao Komatsuda2 (1IPSR, Okayama University, 2Institute of Crop Science, NARO)
Impact of nucleotide diversity among homoeologs in wheat breeding
Tsuyoshi Tanaka (Institute of Crop Science, NARO)
Genetic basis of grain number in Triticeae
Shun Sakuma1,2, Thorsten Schnurbusch1, Takao Komatsuda3 (1IPK, Gatersleben, Germany, 2Tottori University,
3
Institute of Crop Science, NARO)
Prediction of flowering time and GWAS of yield components of spring wheat in Kazakhstan (Europe 20 Project)
Yerlan Turuspekov (Institute of Plant Biology and Biotechnology, Kazakhstan)Precision mutagenesis of miRNA172 target sequence involved in cleistogamy in rice
Namie Ohtsuki1, Takao Komatsuda2, Hitoshi Yoshida1, Ayako Nishizawa-Yokoi1, Keishi Osakabe3, Hiroaki
Saika1, Seiichi Toki1,4 (1Institute of Agrobiological Sciences, NARO, 2Institute of Crop Science, NARO,
3
Tokushima University, 4Kihara Institute for Biological Research, Yokohama City University)
Increasing recombination in the peri-centromeric regions of large barley chromosomes
Robbie Waugh (The James Hutton Institute and University of Dundee, UK)
Isolation of a resistance gene against wheat yellow mosaic virus
Takako Suzuki (Hokkaido Research Organization)
Pre-harvest sprouting tolerance in barley and wheat
Shingo Nakamura (Institute of Crop Science, NARO)- 47 -

Taiwan Japan Plant Biology 2017
November 3-6, 2017
Humanities and Social Sciences Building, Academia Sinica, Taipei, Taiwan.
Chair of organizing committee: Wataru Sakamoto (IPSR, Okayama University, Japan) and
Ming-Tsair Chan (ABRC, Academia Sinica, Taiwan)
Keynote
1. Live-Cell Analyses of Key Signaling Molecules in Pollen Tube GuidanceHigashiyama, T. (Nagoya University, Japan)
2. Dissipation of excess light energy for photosynthesis in microalgae
Minagawa, J. (National Institute for Basic Biology, Japan)
3. Molecular manipulation of viral gene silencing suppressor to generate effective mild strains for cross protection
Yeh, S. D. (National Chung Hsing University, Taiwan)
4. Evolution in the cycles of life
Bowman, J. (Monash University, Australia)
5. Systems Approaches to Unravel Plant Gene Regulatory Networks
Grotewold, E. (Michigan State University, USA)6. MicroRNA-mediated Surveillance of Phosphate Transport– Uptake, Translocation and Storage
Chiou, T. J. (ABRC/Academia Sinica, Taiwan)
Session 1: Environmental responses, Abiotic stresses
7. Blue light-signalling pathway in stomatal guard cells
Kinoshita, T. (Nagoya University, Japan)
8. Signaling pathways and adaptation to drought and heat stress conditions
Yamaguchi-Shinozaki, K. (University of Tokyo, Japan)
9. Temperature and light signals in cold acclimation and freezing tolerance
Uemura, M. (Iwate University, Japan)
10. Novel mechanisms of heat tolerance in plants revealed by studying heat-intolerant mutants
Wu, S. J. (National Central University, Taiwan)
Session 2: Biomembrane, Ion and solute transporters
11. Polar localization and endocytic degradation of boric acid/borate transport proteins
Takano, J. (Osaka Prefecture University, Japan)
12. Roles of Casparian strips and apoplastic barrier in nutrient transport
Kamiya, T. (The University of Tokyo, Japan)
13. Physiological and Molecular Response of Arabidopsis Exposed to technology-critical metals Ga, In and Tl
Yeh, K. C. (ABRC/Academia Sinica, Taiwan)
14. Roles of CIPKs in nitrate transport and signaling
Tsay, Y. F. (IMB/Academia Sinica, Taiwan)
Session 3: Organelles, Cytoskeletons
15. Chloroplast DNA and nutrient salvage: a new concept
Sakamoto, W. (Okayama University, Japan)
16. Dynamics of mitochondria and their nucleoids in Arabidopsis and Marchantia
Arimura, S. (Tokyo University, Japan)
17. Posttranscriptional regulation of mitochondrial gene expression in Arabidopsis Mechanisms of RNA editing inmitochondria- 48 -

Hsieh, M. H. (IPMB/Academia Sinica, Taiwan)
18. Protein import into plastids
Li, H. M. (IMB/Academia Sinica, Taiwan)
Session 4: Plant-microbe interaction
19. Evolution of root nodule symbiosis in legumes
Hayashi, M. (RIKEN, Japan)
20. Phosphate status-dependent control of plant immunity in Arabidopsis thaliana
Saijo, Y. (Nara Institute of Science and Technology, Japan)
21. Viral pathogenic synergism in infected Phalaenopsis orchid
Lin, N. S. (IPMB/Academia Sinica, Taiwan)
22. The Arabidopsis defensin gene, AtPDF1.1, mediates anti-bacterial activity via an iron-withholding defense system
Chan, M. T. (ABRC/Academia Sinica, Taiwan)
Session 5: Evolution, Taxonomy, Non-model plant, Education
23. Exploring genetic modules controlling floral symmetry in Darwin's Gloxinia, Sinningia speciosa
Wang, C. N. (National Taiwan University, Taiwan)
24. Understanding the molecular mechanisms of dimorphic leaf development in response to submergence using
non-model plants Callitriche
Koga, H. (University of Tokyo, Japan)
25. B- and E-class MADS-box genes involved in regulating orchid flower development
Pan, Z. J. (National Taiwan University, Taiwan)
26. Silvery fir tree, a heirloom tomato showing highly complex leaves, provides insights into leaf development and theirbreeding history
Nakayama, H. (UC Davis, USA)
Session 6: Photoreceptors, Photoresponses / Clock
27. Phytochrome modulates alternative splicing by silencing spliceosome activity with hnRNPs in plants
Tu, S. L. (IPMB/Academia Sinica, Taiwan)
28. The activator complex of the morning gene CCA1 in Arabidopsis circadian clock
Wu, S. H. (IPMB/Academia Sinica, Taiwan)
29. Photoactivation and inactivation of plant cryptochromes
Oka, Y. (Fujian Agriculture and Forestry University, China)
30. Phytochrome globally modulates protein localization in Arabidopsis
Matsushita, M. (Kyushu University, Japan)
Session 7: Plant hormones / Signaling molecules
31. Root-derived trans-zeatin and its precursor control different set of shoot growth traits
Sakakibara, H. (RIKEN, Japan)
32. Manipulation of cellular auxin distribution by chemical biology approach
Hayashi, K. (Okayama University of Science, Japan)
33. The crosstalk of jasmonates and phytochrome A is critical for Arabidopsis seedling development
Hsieh, H. L. (National Taiwan University, Taiwan)
34. Mechanism of converging sugar and oxygen deficiency signaling in rice
Yu, S. M. (IMB/Academia Sinica, Taiwan)
Session 8: Membrane trafficking, Cell walls
35. Secondary cell wall patterning in metaxylem vessels
Oda, Y. (National Institute of Genetics, Japan)- 49 -

36. Diversification of membrane trafficking pathways during land plant evolution
Ueda, T. (National Institute for Basic Biology, Japan)
37. Roles of endomembrane trafficking in regulating the Arabidopsis embryogenesis
Jauh, G. Y. (IPMB/Academia Sinica, Taiwan)
38. Modulators of stomatal signaling and ER-PM contact sites
Ho, C. M. K. (Stanford University, USA)
Session 9: Photosynthesis, Environmental response of photosynthesis and respiration
39. Regulatory network of photosynthetic electron transport via proton motive force
Shikanai, T. (Kyoto University, Japan)
40. Investigating physiological functions of cytochrome b559 and QC in photosystem II
Chu, H. A. (IPMB/Academia Sinica, Taiwan)
41. Molecular mechanisms of chloroplast protein import and their curious evolutionary history
Nakai, M. (Osaka University, Japan)
42. Chlorophyll salvage cycle and its role in photosynthesis
Charng, Y. Y. (ABRC/Academia Sinica, Taiwan)
Session 10: Vegetative growth
43. Molecular Basis for Developmental Stage Dependent Leaf Morphology of Rice
Kyozuka, J. (Tohoku University, Japan)
44. Transcriptional Regulatory Network of Secondary Cell Wall Biosynthesis Genes in Populus trichocarpa
Lin, Y. C. (National Taiwan University, Taiwan)
45. Mechanisms of Auxin-Regulated Lateral Root formation in Arabidopsis
Fukaki, H. (Kobe University, Japan)
46. Dissecting Molecular Function of Arabidopsis Histone Deacetylase 15
Cheng, Y. S. (National Taiwan University, Taiwan)
Session 11: Cell/cycle/Cell division
47. GEMMA CUP-ASSOCIATED MYB1, a homologue of axillary meristem regulator RAXs/Blind, is essential for
vegetative reproduction in the liverwort Marchantia polymorphaIshizaki, K. (Kobe University, Japan)
48. Maintenance of genome integrity in root stem cells
Umeda, M. (Nara Institute of Science and Technology, Japan)
49. Protein-lipid interactions facilitate the inter-cellular movement of cell fate-determining transcription factors in the
Arabidopsis root epidermis
Schmidt, W. (IPMB/Academia Sinica, Taiwan)
50. Glutathione-mediated redox regulation of the cell cycle
Fang, S. C. (ABRC/Academia Sinica, Taiwan)
Session 12: Transcriptional and post-transcriptional regulation, Epigenetic regulation, Systems biology, Protein
modification and degradation
51. Novel Epigenetic, RNA and Peptide Regulation in Plant Abiotic Stress Adaptation
Seki, M. (RIKEN, Japan)
52. Epigenetic regulation of intronic repeats in plants
Saze, H. (Okinawa Institute of Science and Technology Graduate University, Japan)
53. Brassinosteroid-Regulated Phosphorylation Dynamics in Arabidopsis
Juan, H. F. (National Taiwan University, Taiwan)
54. Discovery of Innate Peptide Elicitors for Triggering Plant Defense Responses
Chen, Y. R. (ABRC/Academia Sinica, Taiwan)- 50 -

Session 13: Reproductive growth, Flowering
55. Modulation of floral meristem identity by mobile AGL24 mRNA in Arabidopsis
Yu, T. S. (IPMB/Academia Sinica, Taiwan)
56. Elucidation of unique orchid reproductive growth from the orchid genome comparison
Tsai, W. C. (National Cheng Kung University, Taiwan)
57. Synchronized flowering of plants
Sateke, A. (Kyushu University, Japan)
58. Floral meristem development in Arabidopsis
Yamaguchi, N. (Nara Institute of Science and Technology, Japan)
Session 14: Primary metabolism, Secondary metabolism
59. Phosphatidylcholine in Arabidopsis: metabolism and function in growth and development
Nakamura, Y. (IPMB/Academia Sinica, Taiwan)
60. Complexity generation in the biosynthesis of indole alkaloids
Lin, H. C. (IBC/Academia Sinica, Taiwan)
61. Redesign of terpenoid biosynthesis pathway in plant by genome editing
Muranaka, T. (Osaka University, Japan)
62. Studies for understanding the regulation of amino acid biosynthesis
Hirai, M. Y. (RIKEN, Japan)
Session 15: Ecophysiology, Bioresources, Emerging technologies, Crop and Agriculture
63. Identification of miRNAs and their targets in the liverwort Marchantia polymorpha by integrating RNA-Seq anddegradome analyses
Lin, S. S. (National Taiwan University, Taiwan)
64. Use of extract from Bacillus culture for cell disruption of microalgae and the potential mechanism
Chen, J. C. (National Taiwan University, Taiwan)
65. Marchantia polymorpha as an emerging model for comparative genomics and genetics in land plants
Kohchi, T. (Kyoto University, Japan)
66. Tomato genome engineering by targeted nucleotide substitution
Miura, K. (Tsukuba University, Japan)

Africa Day 2017
December 14, 2017
Okayama University, Faculty of Agriculture
Organizers: Yoshiyuki Tanaka (Okayama University) and Akio Tani (IPSR, Okayama University)
Lecture Session
1. AFRICA-ai-JAPAN プロジェクト紹介ーケニア、ジョモ・ケニヤッタ農工大学での活動
Shiomi, S. (AFRICA-ai-JAPAN Project)
2. Insights on some of the postharvest related research on fruits and vegetable in Kenya
Owino, W. (Jomo Kenyatta University of Agriculture and Technology)
3. Cross-kingdom viral infection between plants and insects: An evolutionary insight into rhabdoviruses
Kondo, H. (IPSR, Okayama University)
Poster Session with Flash Talks- 51 -

共同利用・共同研究ワークショップ「植物体再生技術とその分子基盤」
日程：平成 29 年 12 月 25 日
場所：岡山大学資源植物科学研究所
オーガナイザー：久野 裕（岡山大学・植物研）
１．オオムギの遺伝子改変基盤の構築
久野 裕（岡山大学資源植物科学研究所）
２．分化全能性を制御する仕組みと応用
岩瀬 哲（理化学研究所 環境資源科学研究センター）
３．維管束分化のケミカルバイオロジー ～新規な植物ホルモン・サーモスペルミンの機能解析～
本瀬宏康（岡山大学大学院自然科学研究科）
４．植物の種々の分化能力を用いた大量増殖システム -要素技術と実用例大西 昇（キリン株式会社 R＆D 本部 基盤技術研究所）

共同利用・共同研究ワークショップ「圃場の作物を取り巻く根圏生態系の動態」
日程：平成 29 年 12 月 26 日
場所：岡山大学資源植物科学研究所
オーガナイザー：谷 明生（岡山大学・植物研）
・最相大輔（岡山大学・植物研）
１．作物の真の姿を知る！－イネの葉を用いたフィールドトランスクリプトーム解析－
井澤 毅（東大院農学生命）
２．フィールドアグリオミクスにより有機農業を科学する
市橋泰範（理化学研究所）
３．根圏環境で植物由来成分は機能しているのか？
平舘俊太郎（九州大農学研究院）
４．植物共生細菌が要求する、普通培地に加えない元素ランタノイド
谷 明生（岡山大学・植物研）- 52 -

学会賞等 (Awards)
植物ストレス学グループ, 山地直樹（准教授）, 平成 29 年度若手科学者賞,「植物の無機栄養素分配機構に関する研究」, 文部科学大臣表彰, 東京, 4 月 19 日, 2017.
植物・微生物相互作用グループ, 鈴木信弘（教授）, 2017 年度学会賞,「マイコウイルス研究の新展開」, 日本
植物病理学会, 4 月 26 日, 2017.
植物・微生物相互作用グループ, Annisa Aulia（博士後期課程 1 年）, 優秀発表賞, “Comparison of the behaviors of
mycoreovirus 1 and 2 in the fungal host, Cryphonectria parasitica, reveals natural variation in anbtiviralRNAi.” 第 32 回中国四国ウイルス研究会, 6 月 10 日, 2017.
環境応答機構研究グループ／イオンダイナミクス班，森 泉（准教授）, 2017 年度 JPR 論文賞 Best paper 賞, 日本植物学会「Riichiro Yoshida, Izumi C. Mori, Nobuto Kamizono, Yudai Shichiri, Tetsuo Shimatani, Fumika
Miyata, Kenji Honda, Sumio Iwai (2016) “Glutamate functions in stomatal closure in Arabidopsis and favabean”. Journal of Plant Research 129: 39-49」, 6 月 15 日, 2017
Group of Plant Stress Physiology, Kengo Yokosho (Assistant Professor), Marschner young scientist award, “Identificationof transporters involved in metal stress tolerance in plants”, International Plant Nutrition Colloquium 2017,
Copenhagen, August 22, 2017.
（植物ストレス学グループ, 横正健剛（助教）, Marschner 若手科学者賞,「植物の金属ストレス耐性に関与する輸送体の同定」, 国際植物栄養会議, コペンハーゲン, 8 月 22 日, 2017.）
植物成長制御グループ, 山本洋子（名誉教授）, 2017 年度第 62 回 日本土壌肥料学会賞, 「植物細胞におけるア
ルミニウム障害ならびに耐性機構に関する研究」, 日本土壌肥料学会, 仙台, 9 月 6 日, 2017.
ゲノム多様性グループ, 佐藤和広（教授），平成 29 年度日本醸造協会技術賞,「ビールの泡品質を良くするためのプロテオーム解析とそのビール大麦育種への応用」, 10 月 11 日, 2017.
Group of Genome Regulation（ゲノム制御グループ）, Wan-Yi Chiou (3rd year Doctor’s course), Taiwan-Japan Plant
Biology 2017 Outstanding poster award, “Genetic analysis of the large grain mutant found intransposon-tagged lines of rice”, Nov. 3-5, 2017.
植物ストレス学グループ, Ji Feng Shao（特別契約職員助教）, Best Presentation Award, “Molecular mechanisms forpreferential distribution of boron in rice”, 2017 年度日本土壌肥料学会関西支部会, 12 月 7 日, 2017.

- 53 -

准教授

助教

准教授

北海道大学・大学院水産科学研
究院

北海道大学・大学院理学研究院

国立高等専門学校機構・熊本高等専門学校・生物化学システム工学科

農業・食品産業技術総合研究機
構・農業環境変動研究センター

研究員

助教

准教授

立命館大学・生命科学部

神戸大学・大学院農学研究科

准教授

教授

広島大学・大学院理学研究科

関西学院大学・理工学部教授

京都産業大学・総合生命科学部

准教授

広島大学・大学院理学研究科

名

助教

職

東北大学・大学院農学研究科

所属機関・部局

ゆり

信

徹

裕士

雅也

名

秀臣

浩司

櫻井

石川

玄

亮

木原 久美子伊藤

三上

深尾 陽一朗

宗景

草場

寺地

島田

山本

氏

坂本

坂本

森

老化関連突然変異体の生理・生化学的解 Physiological and biochemical analysis of析
senescence-related mutants
キク科C4種Flaveria bidnentis 変異株の作出 Generation of C4 Flaveria bidentis mutants andanalysis of C4 photosynthesisと光合成特性の解析
シロイヌナズナにおいて亜鉛欠乏時に機 Molecular mechanisms of peptides under zinc
能するペプチドの機能解析
deficiency in Arabidopsis

作物におけるミネラル輸送の調節過程の Modeling of the regulation processes of the mineral
モデル解析
transportation in crops

野生イネ由来の種子亜鉛濃度を向上させ Breeding of high quality rice by a gene increasing
る遺伝子を用いた高機能性イネの育種
zinc concentration of the seed from wild rice

イグサの成長に影響を及ぼすストレス応 The growth response of mat rush（Juncus effuses ）答と植物ホルモンに関する研究
to environmental stress and plant hormone

環境ストレス活性型転移因子を制御する Analysis of chromatin structures which regulate an
クロマチン構造の解析
environmental stress-activated transposon

馬

馬

平山

池田 陽

池田陽・平山坂本

葉緑体形質転換用シャトルベクターを用 Production of stress-tolerant plants using shuttle
いたストレス耐性植物の作出
vector for chloroplast transformation

海藻におけるストレス応答のエピジェネ Epigenetic regulation of the stress response in
ティック制御seaweeds

坂本

CYO1/CYO2遺伝子高発現植物の光合成活 Analysis of photosynthesis in CY01/CY02 overexpression plants
性測定

受入
教員名
坂本

課題名（英語名）

Study on effects of high-temperature growth
アブラナ科植物の自家不和合性形質が弱condition on self-incompatible response in
くなる高温条件に関する研究
Brassicaceae

課題名

共同研究リスト（共同利用・共同研究拠点事業） (List of Joint Projects at the Joint Usage/ Research Center)

名

准教授

教授

奈良女子大学・研究院自然科学
系生物科学領域

東京大学・大学院理学系研究科

名

純

福原

堀江

寺島

奈良

和崎

敏行

智明

教授

教授

東京家政大学・家政学部

藤森鈴木

Functional analysis of mycoviruses in Grifola
frondosa

近藤・鈴木

谷

ムギ植物体からの内生アグロバクテリア Isolation and comprehensive characterization of
菌株の単離と解析
endophytic Agrobacterium strains from wheat

文啓 マイタケのウイルスの機能解析研究

克周

鈴木

鈴木

菌類ダイサーの２本鎖RNA切断活性の生 Biochemical characterization of dsRNA-cleaving
activities of fungal Dicers
化学的解析
フザリウム属菌のヴァイロコントロール Screening for and identification of fungal virusesを目指した菌類ウイルスの探索と同定
from Fusarium sp. toward their virocontrol

且原

且原・森

且原

佐々木

佐々木

Elucidation of the physiological function of ion
植物の塩ストレス耐性機構に関与するイ
channels that work in the mechanism of plant salt
オンチャンネル分子の生理機能の解明
tolerance

シロイヌナズナの細胞膜アクアポリンの Comprehensive analyses of CO2 permeability in
一郎 CO 透過性の網羅的解析
2aquaporins in Arabidopsis thaliana

Analysis of the water and hydrogen peroxide
permeability of AtTIP2;2 in Arabidopsis thaliana

低リン耐性の高い植物による有機酸分泌 Analyzes of molecular mechanisms involved inの分子機構の解析
organic acid exudation by low-P tolerant plants

イオンチャネルを基盤とした環境ストレ Engineering crop stress resistance through
ス耐性作物作出技術の開発
manipulating ion channels

馬・山地

モデル樹木ポプラにおけるカリウムチャ Localization analysis of potassium channel, SKOR,
ンネルSKORの局在解析
in the model tree poplar

受入
教員名
馬

課題名（英語名）

気孔開口を制御する新規金属イオン輸送 Functional analysis of the novel metal transporter in
体の機能解析
stomatal opening

課題名

シロイヌナズナの液胞膜アクアポリン
久美 AtTIP2;2の水及び過酸化水素透過性の測
定淳

宗正 晋太郎

古川井上 晋一郎氏

特任准教授 千葉 壮太郎

教授

広島大学・大学院理学研究科

名古屋大学・アジアサテライト
キャンパス学院

東京農工大学・大学院農学研究
院

准教授

教授

広島大学・大学院生物圏科学研
究科

信州大学・繊維学部

助教

准教授

助教

職

岡山大学・大学院環境生命科学
研究科

筑波大学・生命環境系

名古屋大学・大学院理学研究科

所属機関・部局教授

教授

龍谷大学・農学部准教授

鳥取大学・農学部

吉備国際大学・地域創成農学部

教授

ユニット長

農業・食品産業技術総合研究機
構・次世代作物開発研究セン
ター

神戸大学・大学院農学研究科

教授

東京農工大学・大学院農学研究
院

教授

教授

高知大学・教育研究部

神戸大学・大学院農学研究科教授

岡山大学・農学部准教授

東京大学・生物生産工学研究セ
ンター

名

准教授

職

東京理科大学・基礎工学部

所属機関・部局

名

章範

康隆

憲典

古本

石原

課題名（英語名）
Galis・新屋

受入
教員名

佐藤

オオムギの耐塩性QTLの単離に関する研
Identification of a QTL for salt tolerance in barley
究

佐藤

武田

武田

武田・佐藤

ムギ類における異質倍数化過程での選択 Alteration of alternative splicing during
的スプライシングの変動
allopolyploidization in wheat and relatives
オオムギおよびイネの細葉変異体および Comparative molecular genetic analysis of narrow
多節矮性変異体の比較分子遺伝学的解析 leaf and plastochron mutants between barley and rice
Analysis of defensive secondary metabolism and its
抵抗性育種を志向したオオムギにおける
diversity in barley as the basis of breeding of
防御関連二次代謝とその多様性の解明
resistant lines against pathogens and herbivores
オオムギ遺伝資源を用いた温度不感受変 Screening of ambient temperature-insensitive lines
異系統の確立from the barley collection

薫雄

久野・佐藤

最相

Galis

植物免疫応答誘導に関わる細胞内情報伝 Analysis of intracellular signaling mechanisms for
達機構の解析
plant immune responses

オオムギの日長反応性出穂制御の遺伝的 Genetic analysis for the photoperiodic control of解析heading in barley

Galis

果実の低温誘導成熟機構の分子生物学的 Study on molecular mechanism of low-temperature
解析
induced fruit ripening

植物の化学防御におけるオキシリピン情 Molecular mechanisms and evolutionary trajectory of
新屋・Galis
報伝達の分子機構とその進化
oxylipin signaling on chemical defense in plants

植物の害虫誘導性防御における分子シス Molecular mechanisms for induced plant defense
テムの解明
against herbivores

課題名

オオムギのいもち病抵抗性遺伝子Rmo2ア Cloning of Rmo2 alleles conditioning resistance of
幸雄 リルのクローニングと対応する非病原力 barley to Pyricularia oryzae and analyses of their
遺伝子との相互作用解析
interaction with corresponding avirulence genes

裕一

強

亨

吉川 貴徳

宅見

土佐

半田

大川 泰一郎木場久保

岡田

有村 源一郎

氏

名

教授

助教

助教

准教授

教授

助教

准教授

教授

助教

自然科学研究機構・基礎生物学
研究所

奈良先端科学技術大学院大学・
バイオサイエンス研究科

名古屋大学・大学院生命農学研
究科

東京大学・大学院理学系研究科

自然科学研究機構・基礎生物学
研究所

情報・システム研究機構・国立遺伝学研究所

北海道大学・大学院農学研究院

北海道大学・大学院農学研究院

准教授

助教

職

熊本大学・大学院先端科学研究部

静岡大学・理学部

信州大学・先鋭領域融合研究
群・山岳科学研究所

所属機関・部局

名

佐藤

橋床

前川・佐藤

イネ科植物におけるDNA倍加の制御に関 Study on regulation of endoreplication in species
within the grass family
する研究

昌直

植木

前川

Genetic trait and symbiotic mechanisms of the low
イネ内生窒素固定細菌Burkholderia
kururiensisが低窒素耐性アフリカイネ交雑 nitrogen-tolerant,African wild rice hybrid LIA-1 with泰之
後代系統イネLIA-1の宿主になる理由を受 endophytic nitrogen-fixing bacterium Burkholderia
kururiensis
容体タンパクとイネゲノムに求める
Establishment of transcriptome database of a bloomforming algae, Heterosigma akashiwo

前川

イネnDARTタグラインを用いた生殖関連 The analysis of reproduction-related mutants selectedfrom nDART-tagged lines in rice
突然変異体の選抜と解析

赤潮原因藻ヘテロシグマの遺伝子配列
データベースの構築

前川

前川

長岐

エピジェネティック制御によるDNA倍加 Induction of DNA polyploidization by epigenetic
regulation
誘導

イネの花序や花の発生に関する分子遺伝 Molecular genetic studies on flower and学的研究
inflorescence development in rice長岐

アサガオの遺伝子資源を用いたエピジェ Epigenetics on the bioresources of the Japanese
ネティクス
morning glory

DNAトランスポゾンnDart1の挿入による Analysis of dominant mutations induced by insertionof DNA transposon, nDart1 in rice
優性変異の解析

一夫

博之

正樹

大知

敦

池田 啓

池田 啓

Elucidation of cold tolerance mechanism of the
富士山の冬を常緑ですごすフジハタザオ
alpine plant, Arabis serrata which overwinters withの耐寒メカニズムの解明
green leaves

受入
教員名
池田 啓

課題名（英語名）

マメ科高山植物－根粒菌共生系の分布変 Historical biogeography and host specificity of
遷と宿主特異性symbiosis between alpine legumes and rhizobia

課題名

Genetic diversity of endangered plant species
絶滅が危惧される大陸系遺存植物の遺伝
representing the relict Korea-Manchuria grassland
顕子
的多様性の解析
elements暁子

野々村 賢一

栂根

平野

伊藤

高塚

星野

副島

木嵜

髙梨 功次郎氏

Annual Report 2017

Director:

Masahiko Maekawa

Editorial Members:

Sanae Rikiishi
Takako Nakato
Naoki Yamaji

Published by Institute of Plant Science and Resources, Okayama University
Chuo 2-20-1, Kurashiki 710-0046, Japan
TEL: +81-86-424-1661
FAX: +81-86-434-1249

岡山大学資源植物科学研究所報告 第 25 巻
(Annual Report 2017)平成 30 年 3 月 25 日
平成 30 年 3 月 31 日
発行

所

編 集 委 員印刷
発行

岡山大学資源植物科学研究所
710-0046 倉敷市中央 2 丁目 20-1
TEL： 086-424-1661
FAX： 086-434-1249
力石 早苗
中戸 孝子
山地 直樹