生物工学会誌第94巻 第4号

特集

RNA による遺伝子発現制御デバイス横林洋平

遺伝子発現の制御は合成生物学の基盤的技術であり，知られているが，ON 選択と OFF 選択において異なる

現在でも，野生型もしくは改変された転写制御因子タンマーカーを用いると，偽陽性の増加やマーカー変更の手パク質と，それらに付随するプロモーターによる転写制間が問題となる．

御技術がその主流である．その一方で，過去数十年間に試行錯誤の結果，我々は tetA という単一のマーカー遺リボスイッチや microRNA など，主として RNA が関与

伝子を ON 選択と OFF 選択の両方に用いることにより，する遺伝子発現制御機構が次々と明らかになるにつれ，効率的な人工リボスイッチの選択が可能になることを見

古典的な転写制御因子をはじめとする，タンパク質を中いだした（図 1a）．TetA はテトラサイクリン排出トラン心としたネットワークが遺伝子発現を制御しているといスポーターという膜タンパク質であり，発現時（ON）う，分子生物学のイメージは見直しを迫られている．には宿主にテトラサイクリン耐性を付与する．しかし，遺伝子発現制御以外にも，RNA は多彩な機能を持つ過剰発現下においては，細胞膜を不安定化し，Ni2+ などことが知られている．mRNA や tRNA による遺伝情報の有毒物質に対する感受性が高くなると報告されていの伝達はもちろん，自己切断やスプライシング機能を持る 1)．つまり非発現状態（OFF）では，宿主はテトラサつリボザイム，分子認識能を持つアプタマーなど，そのイクリン感受性であるが，Ni2+ 耐性となる．したがって，化学的，生物学的機能の幅広さは，生命の誕生においてON 選択はテトラサイクリン，OFF 選択は Ni2+ により行RNA が中心的な役割を果たしたとする RNA ワールド仮うことができる．

説の根拠の一つとなっている．

もちろん単一の選択マーカーを使う利点の一つは，筆者のグループでは，RNA の多様な機能に着目し，ON・OFF 選択間で，マーカーの入れ替えが不要なこと合成生物学に応用可能な，RNA による遺伝子発現制御であるが，同時に偽陽性の抑制も重要である．遺伝的選デバイスを設計できないかと考え，2004 年頃より研究を行ってきた．本稿ではその主な成果を中心に，特にRNA デバイスを設計するために，我々が開発した手法に焦点を当てて紹介する．
大腸菌で働く人工リボスイッチ：遺伝的選択
リボスイッチとは 2002 年に初めて報告された，主にバクテリアの mRNA の 5' 非翻訳領域（UTR）に存在する遺伝子発現制御スイッチである．ビタミン類，アミノ酸，塩基などの代謝物を，そのアプタマー領域で認識し，それに伴う RNA の二次構造変化により，翻訳もしくは転写プロセスを制御する．リボスイッチとはいえ，その出力は任意の遺伝子の発現の有無であることから，遺伝的選択（セレクション）法の利用を試みた．
遺伝的選択においては，まずスイッチや回路の一部をランダム化してライブラリを作製し，それらの出力がON になるべき条件と OFF になるべき条件下で，望みの状態を示す変異体のみが生存もしくは増殖できるような選択圧を加えることにより，最終的に望みの機能を有する変異体を得ることができる．ON 選択および OFF 選択に用いることが可能なマーカー遺伝子は，多くのものが著者紹介

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図 1．TetA による Dual Genetic Selection．
（a）TetA による ON
選択と OFF 選択のメカニズム．（b）TPP 応答性人工リボスイッチの選択のために作製されたライブラリ．

沖縄科学技術大学院大学核酸化学・工学ユニット（准教授） E-mail: yohei.yokobayashi@oist.jp

生物工学

第94巻

合成生物学の基盤技術の構築
択においては，自然変異による偽陽性の出現は不可避である．たとえば tetA 配列内でフレームシフトを生じる突然変異が起きた場合，遺伝子発現が ON であっても OFF選択を通過してしまう．しかしながら，このような単純な変異体は，もう一度 ON 選択を行うことにより，ほぼ間違いなく排除することができる．もし ON 選択と OFF選択両方を通過できるような TetA 変異体が出現すれば，偽陽性として問題になるが，そのような表現形が自然発生する確率はきわめて低いと考えられる．
我々はこの選択系を Dual Genetic Selection と名付け，それを利用してさまざまな人工リボスイッチを開発した．最初に，自然界にもっとも広く分布するリボスイッチである，チアミン二リン酸（TPP）に応答するリボスイッチに注目した．TPP リボスイッチは主に TPP 生合

図 2．バンド・パス回路．（a）応答性が逆の 2 つのリボスイッチを合成したもの 5)．（b）Weiss らによる，4 つの転写因子を組み合わせたもの 6)．

成に関わる酵素の発現の負フィードバック制御に関わっているため，これまでに解析された TPP リボスイッチ

ど，多くのパラメーターの調整および最適化が必要となはすべて OFF スイッチ（TPP 存在下で遺伝子発現が抑るが，人工リボスイッチは上記のように限定的なライブ制される）として機能する．我々は TPP アプタマー下ラリ作製と遺伝的選択による開発が可能である．

流部をランダム化したライブラリ（図 1b）から，TPP存在下で遺伝子発現が活性化される ON スイッチを選択

動物細胞で働く RNA デバイス：モジュラー戦略

した 2,3)．得られたリボスイッチの中には，遺伝子発現動物細胞においても RNA デバイスは有望であるが，の ON/OFF 比が 50 を超え，この種の人工リボスイッチ

我々が大腸菌で使った，遺伝的選択のような高スルー

では最高部類の性能を示すものも含まれた 3)．

プットな選択やスクリーニングを細胞を用いて実現する

さらに，TPP リボスイッチの上流に別のアプタマー（テことは技術的に困難である．したがって，我々は分子認オフィリン）を加え，二種類の化合物に対して，論理回識や遺伝子発現制御といった，単一の機能を有する

路 的 な 応 答 を す る， 二 入 力 型 リ ボ ス イ ッ チ を DualRNA 要素を，段階的に組み合わせて高度な機能を持つRNA デバイスを設計する，モジュラー設計戦略を追求

Genetic Selection で開発した 4)．さらに TPP 応答性の ONスイッチと OFF スイッチを連結することにより，中間濃度においてのみ遺伝子発現が起こるバンド・パス応答5)性リボスイッチを作製した （図 2a）．

した．
その一つとして，アプタマー，リボザイム，そしてmicroRNA 前駆体（pri-miRNA）を一つの分子に統合

ここで特筆すべき点は，複数の分子の認識，情報処理，テオフィ
した，化学的 RNAi 誘導デバイスがある 7)．まず，そして遺伝子発現制御というきわめて複雑な機能が，わリンアプタマーとリボザイムを組み合わせて，テオフィ

ずか 300 塩基余りの RNA で実現されているということリン応答性リボザイム（アプタザイム）を作製し，さらである．たとえば，Weiss らが 2005 年に報告した，転写に pri-miRNA の 5' 末端に結合することにより，リボザ因子を用いたバンド・パス回路 6) では 4 つの転写因子とイムによる自己切断が起こった時のみに pri-miRNA が5 つのプロモーターが使用されている（図 2b）．

放出されるように設計した（図 3a, b）．

人工リボスイッチがタンパク質回路に比べて遺伝子サ

また，Smolke らはアプタザイムを mRNA の 3'UTR

イズ的にコンパクトであることには，いくつかの利点がに挿入することにより，バクテリアのリボスイッチのよある．まず，小さいサイズと，タンパク質翻訳を伴わなうに制御対象遺伝子をシスに制御できることを示した 8)．

いことで，宿主に対する代謝負荷が少ないことが期待で我々も HDV リボザイムを基に，グアニンおよびテオフィきる．近年人工遺伝子回路が宿主に及ぼす影響が無視でリンに応答するアプタザイムを開発し，動物細胞内でのきないことが明らかになってきており，低負荷で高度な遺伝子発現制御に応用した 9)（図 3c）．

機能が実現可能なリボスイッチは，大いに役立つと考えられる．さらに，複数の転写因子からなる回路は，それぞれの転写因子の発現レベルやプロモーターの強度な2016年 第4号

リボザイムの高速評価と設計
主にウイルスに由来する，自己切断活性を示すリボザ

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特集

図 4．次世代シーケンシング法によるリボザイム活性の高速評
価法
図 3．モジュラーな RNA デバイス設計．（a）機能性 RNA を段階的に組み合わせて，高度な機能を持つ RNA デバイスを設計する，モジュラー戦略の概念図．
（b）化学的 RNAi 誘導デバイ
ス．（c）mRNA の 3'UTR に挿入されたアプタザイムによる，シス型遺伝子発現制御デバイス．

ド配列を挿入することにより，アプタマーリガンドの有無などの反応条件に関する情報を埋め込むこともできる．さらに cDNA の 3' 末端に NGS 用アダプター配列をイムは古くから知られているが，近年のゲノム情報とバ付加した後，PCR により NGS 解析用サンプルを得る．

イオインフォマティクスの発展により，あらゆる生物にこの手法において重要なのは，ライブラリ中のすべておいて，さまざまなクラスのリボザイムがゲノム中に存の変異体が少なくとも数百分子以上ずつ転写されている

10,11)．それらのリボザイムということである．さらに解読された配列の長短から，の生物学的機能のほとんどは不明であるが，その普遍性各変異体の何％が自己切断されたかを数えることによからリボザイム・アプタザイムの合成生物学的応用にもり，特定の変異体とそのリボザイム活性（切断率）が測期待が持たれる．

定できる．

在することが明らかになった

前項では我々の動物細胞におけるアプタザイムを利用

我々はこの手法を用いて，1500 以上のリボザイム変した RNA デバイスについて述べたが，他にもバクテリ異体ライブラリの切断率を一度に測定し，アプタザイム

ア，酵母，ウイルスにおける遺伝子発現制御への応用もとして細胞内でも機能するものを同定することができ報告されており，アプタザイムの RNA デバイスとしてた．より高い解析能力を持つ装置を使うことにより，理の汎用性は非常に高いと考えられる．しかしながら，ア論的には 106 オーダーのリボザイム変異体の活性を測定プタザイムの開発は簡単ではなく，スクリーニングや半することが可能である．

合理的設計からスタートし，多数の変異体の個別評価が同じく多数の変異体から，目的の活性を持ったリボザイムを選び出す，従来のスクリーニングや選択法との大行われるのが通常である．
我々は最近，次世代シーケンシング（NGS）技術をきな違いは，これら従来の手法では望みの活性を持った応用し，非常に多数（数千個）のリボザイム変異体の活極少数の変異体（「アタリ」）についてのみ，その配列を12)．この手法の概個別に解析するが，その他大多数の「ハズレ」配列とそ略を図 4 に示す．まず，リボザイムの特定部位をランダの活性データは埋もれたままとなることである．しかし，ム化するなどした，目的の変異体を含むリボザイムライ

この膨大な「ハズレ」配列とその活性の相関データを活

ブラリを DNA 鋳型として合成し，in vitro 転写反応を行用することにより，より合理的なリボザイム設計へとつう．次に NGS 用配列を含むプライマーで逆転写反応をながることが期待できるのではないだろうか．また従来

行い cDNA を作製する．その際プライマーにバーコー法では不可能であった規模の配列・活性相関データが得性を定量的に測定する手法を開発した

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合成生物学の基盤技術の構築られることから，リボザイムに関する基礎研究ためののパーツから成る回路の機能に相当する「集積回路」がツールとしても有用であろう．

必要な段階に来ているのかもしれない．

おわりに

RNA による遺伝子発現制御デバイスは，タンパク質と比べて，小さい遺伝子サイズと高度な機能，宿主に対合成生物学の「夢」の一つとして，転写因子やプロモーする低い代謝負荷といった特徴がある．特に，高度な機ターを始めとする，多数の単純なパーツを Plug-and-能を同一分子内にコンパクトに実装するという意味でPlay 式に組み合わせて，複雑な遺伝子回路を組み上げは，合成生物学における集積回路の一つの方向であるとるというビジョンがある．しかしながら，人工遺伝子回も考えられる．これらをタンパク質を基盤としたデバイ路が複雑になるにつれ，宿主の代謝経路に及ぼす影響，スとうまく組み合わせることにより，人工遺伝子回路のパーツ間の予期できない干渉，パーツ自体の環境依存性

高機能化と，設計プロセスの効率化に寄与することを期など，さまざまな不確定要素が影響し，多くの労力が試待する．

行錯誤による回路の最適化に費やされるという現状が明らかになってきた．
工学としての合成生物学のお手本ともいえる，電子工学に目を向けてみると，現代の複雑な電子回路の主役は，抵抗やトランジスタといった基礎パーツではなく，それらを膨大な数内包した集積回路（IC）である．もちろん，原理的には基礎パーツのみで同等の電子回路を組むことは可能であるが，実際には熱の影響や個々のパーツ特性のバラつきにより，設計通りの動作を期待することは困難であろう．人工遺伝子回路においても，パーツ数の増加に伴う合理的設計の限界に（電子回路と比べてその複雑さは未だきわめて低いが）近づいてきているとも考えられる．電子工学のアナロジーを合成生物学にあてはめるのであれば，物理的もしくは生化学的に閉じた，複数

2016年 第4号

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