ISSN 2186 − 4918
CODEN：OSSHEN

岡山大学
資源植物科学研究所報告（Annual Report 2012）
̶

第20巻 ̶

岡山大学資源植物科学研究所
Institute of Plant Science and Resources
Okayama University

表紙の写真（出展）：
The International Barley Genome Sequencing Consortium. 2012. A physical, genetic and functionalsequence assembly of the barley genome. Nature 491：711-716

研究活動目次
Contents of Research Activities
研究活動（Research Activity）
植物ストレス科学共同研究コア（Research Core for Plant Stress Science）
大気環境ストレスユニット (Atmospheric Stress Unit)
光環境適応研究グループ（Group of Plant Light Acclimation Research） …………………………………………… １
細胞分子生化学グループ（Group of Cytomolecular Biochemistry） ………………………………………………… ２
環境応答機構研究グループ（Group of Environmental Response Systems）…………………………………………… ３
土壌環境ストレスユニット（Soil Stress Unit）
植物ストレス学グループ（Group of Plant Stress Physiology） ……………………………………………………… ４
植物成長制御グループ（Group of Plant Growth Regulation）……………………………………………………… ５
分子生理機能解析グループ（Group of Molecular and Functional Plant Biology） …………………………………… ６
環境生物ストレスユニット（Biotic Stress Unit）
植物・微生物相互作用グループ（Group of Plant-Microbe Interactions）…………………………………………………… ７
植物・昆虫間相互作用グループ（Group of Plant-Insect Interactions）……………………………………………………… ８
大麦・野生植物資源研究センター（Barley and Wild Plant Resource Center）
遺伝資源ユニット（Genetic Resources Unit）
ゲノム多様性グループ（Group of Genome Diversity）……………………………………………………………… ９
遺伝資源機能解析グループ（Group of Genetic Resources and Functions）…………………………………………… 10
野生植物グループ（Group of Wild Plant Science） …………………………………………………………… 11
ゲノム育種ユニット（Applied Genomics Unit）
核機能分子解析グループ（Group of Nuclear Genomics）……………………………………………………………… 12
ゲノム制御グループ（Group of Genome Regulation）…………………………………………………………… 13
次世代作物共同研究コア (Research Core for Future Crops)
萌芽的・学際的新展開グループ（Group of Innovative Research）…………………………………………………………… 14
国際的新展開グループ（Group of International Collabolation）…………………………………………………… 14
構成員（Staff） …………………………………………………………………………………………… 15
出版物リスト（List of Publication）……………………………………………………………………………… 17
国際会議およびシンポジウム（List of International Conferences and Symposia） …………………………………………… 23
講演およびシンポジウム発表（List of Domestic Conferences and Symposia）………………………………………………… 27
研究所員が主催したシンポジウム等（List of Symposium Superintended by the Member of Institute） …………………………… 38
共同研究リスト（共同利用・共同研究拠点事業）（List of Joint Projects at the Joint Usage/ Research Center）………………………………… 47

研究活動 （Research Activity）
大気環境ストレスユニット
光環境適応研究グループ
本グループでは、光合成機能を担うオルガネラである
葉緑体（色素体）に注目し、環境ストレス下での葉緑体の機能解析ならびに色素体の多面的な機能について研究を行っている。
１．強光ストレス下における植物の光障害適応機構の解析
光合成において過剰な光エネルギーは光化学系 II に障害をあたえ、光合成機能の低下を引き起こすことが知られている。これを回避するため、光化学系 II では障害をうけた反応中心タンパク質 D1 を直ちに分解／修復し、光化学系全体の機能維持を行っている。これまでの研究から、光化学系 II 修復サイクルでの D1 タンパク質分
解には、チラコイド膜に局在する ATP 依存型メタロプ
ロテアーゼ FtsH と幾つかの ATP 非依存型セリンプロテ
アーゼ DEG の関与していることが示唆されていた。我々は、FtsH と DEG による協調的 D1 タンパク質分解の詳細を明らかにするために、FtsH 及び Deg を欠損する変異体を用いて解析を行い、実際に葉緑体内で協調的に
D1 タンパク質が分解されていることを明らかにした。
２．葉緑体膜の修復に関わる VIPP １タンパク質の解析
葉緑体は過剰な光エネルギーで脂質やタンパク質が損傷を受けやすいため、それらを緩和して環境に適応する
ための様々なしくみを発達させている。特に、葉緑体膜が損傷を受けやすいが、それらを保持する機能については未知であった。我々は、VIPP1 と呼ばれる葉緑体のタンパク質が、損傷を受けた葉緑体の膜を修復しながら葉緑体機能維持に関わっていることを明らかにしている。
このタンパク質 は、葉緑体の包膜と呼ばれる外側の二重膜の内側に大きな複合体を形成し、ストレス条件での膜修復に関与していることも明らかにした。このタンパク質を強化することで、葉緑体での光合成能を強化させ、環境ストレスに強い作物の育成を目指している。
３．オルガネラ DNA の代謝機構に関する研究
オルガネラ内部に保持されているオルガネラ DNA の
量は、植物の発生段階によって変動し一定では無い。特に、花粉の発生過程においてオルガネラ DNA が劇的に減少することが知られている。我々は、花粉におけるオ
ルガネラ DNA の減少が起きないシロイヌナズナ突然変
異体を用いて、オルガネラ DNA 分解に直接関与する核酸分解酵素を同定し解析を行っている。
４．澱粉粒の形状多様性を支配する分子機構の解析
澱粉粒は、植物が光合成産物として色素体内に蓄積するグルコース多量体である。澱粉粒の形状は植物種によって大きく異なるが、その形状多様性を支配する分子機構は現在まで不明である。我々は、澱粉粒の形状に異常を示すイネ突然変異体を単離し解析を行っている。

（Atmospheric Stress Unit）
Group of Plant Light Acclimation Research
Our group has been studying plant adaptation toenvironmental stresses at the molecular level. Especially,
we focus on chloroplasts that participate in the energy
transfer systems of photosynthesis.
1. Plant adaptation mechanism for photodamage
Light energy constantly damages photosynthetic
apparatuses, ultimately causing impaired growth.
Particularly, the sessile nature of higher plants has
allowed chloroplasts to develop unique mechanisms to
alleviate the irreversible inactivation of photosynthesis.
Photosystem II (PSII) is a primary target of photodamage.,
D1 protein in the repair cycle of PSII needs to beefficiently degraded to avoid photodamage. Photosyntheticorganisms have evolved the so-called PSII repair cycle,
in which a reaction center protein, D1, is degraded
rapidly in a specific manner. Two proteases that perform
processive and endopeptidic degradation, FtsH and Deg,
respectively, participate in this cycle. We demonstrate invivo cooperative degradation of D1, in which Deg cleavage
assists FtsH processive degradation under photoinhibitory
conditions.
2. Essential Role of VIPP1 in Chloroplast Envelope
Maintenance in Arabidopsis
VESICLE-INDUCING PROTEIN IN PLASTIDS1(VIPP1), proposed to play a role in thylakoid biogenesis,
is conserved in photosynthetic organisms and is closely
related to Phage Shock Protein A (PspA), which is
involved in plasma membrane integrity in Escherichia
coli. This study showed that chloroplasts/plastids in
Arabidopsis thaliana vipp1 knockdown and knockout
mutants exhibit a unique morphology, forming balloon-likestructures. This altered morphology, as well as lethalityof vipp1, was complemented by expression of VIPP1
fused to green fluorescent protein (VIPP1-GFP). Several
lines of evidence show that the balloon chloroplasts
result from chloroplast swelling related to osmotic stress,
implicating that VIPP1 is involved in the maintenance ofplastid envelopes. Our data demonstrate that VIPP1 is amultifunctional protein in chloroplasts that is criticallyimportant for envelope maintenance.
3. Molecular mechanism of organellar DNA degradation
during pollen development
In plant cells, mitochondria and plastids contain theirown genomes derived from the ancestral bacteria
endosymbiont. We genetically dissected the organelle
DNA decrease in pollen, a phenomenon that appears
to be common in most angiosperm species. By staining
mature pollen grains with fluorescent DNA dye, we
screened Arabidopsis thaliana for mutants in which
extrachromosomal DNAs had accumulated. Such arecessive mutant, termed defective in pollen organelle
DNA degradation1 (dpd1), showing elevated levels of
DNAs in both plastids and mitochondria, was isolated andcharacterized. DPD1 encodes a protein belonging to theexonuclease family, whose homologs appear to be found inangiosperms.
4. Molecular mechanism underlying starch grainmorphologies diversified among plant species
Starch is a biologically and commercially importantpolymer of glucose and is synthesized to form starchgrains (SGs) inside the plastids (amyloplasts). Despite
the simple composition of glucose polymer, SG exhibits
various morphologies and sizes depending on plant
species. However, the molecular mechanisms underlying
this SG diversity remain unknown. To answer thisquestion, we are now analyzing several rice mutants
defective in SG morphologies.

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細胞分子生化学グループ

Group of Cytomolecular Biochemistry

植物の生長過程における細胞の生理機能や植物の有する多様性などを解明するために、細胞を構成する物質を、生化学的手法を用いて、分子レベルで解析している。

We have been studying the physiological functions anddiversity of cells during plant growth at the molecularlevel using biochemical techniques.

１．宇宙環境で生育するミズナのストレス応答・防御遺伝子の発現
微小重力、宇宙放射線、電磁場等の地球上とは全く異なる宇宙環境が植物の発生、生長、世代交代等に与える影響は不明であるが、宇宙放射線と微小重力の相乗効果
によりフリーラジカルが多量に発生し、植物に酸化ストレスを引き起こすことが予測されている。そこで、宇宙環境における植物の応答や適応を明らかにし宇宙スト
レス耐性植物の開発を行う目的で、国際宇宙ステーション（ISS）で生育するミズナにおけるストレス応答・防御遺伝子の発現を検討した。大麦種子を ISS のロシア実
験棟「ズヴェズダ」内に設置されている植物栽培装置「LADA」のルートユニットにセットして日照 24 時間、
気温 25℃、湿度 70% の条件下で 27 日間栽培した。収穫したミズナはすぐに ISS の米国実験棟「デスティニー」
内に設置されている超低温フリーザー「MELFI」に保存
し、スペースシャトル搭載の超低温冷凍庫「GLACIER」に保管し地上へ搬送した。地上にある LADA で気温、湿度、給水量等 ISS 中での栽培条件と同じにして栽培したものを対照とした。葉 total RNA から作製した cRNA を
Agilent 社 Arabidopsis OligoMicroarray（4 x 44K）を用いてマイクロアレイした結果、宇宙栽培ミズナで発現量が対照の 2 倍以上である遺伝子が 2,193 種、1/2 以下である遺伝子が 439 種認められた。発現量が上昇した遺伝子を Gene Ontology に則って機能カテゴリーで分類したと
こ ろ、26% が「response to stress」、18% が「response
to abiotic stimulus」であった。Real-Time PCR 法によりHSP gene、ROS scavenging gene、PR gene の発現量を検討したところ、宇宙栽培ミズナでは対照と比べ HSP17、
HSP18、HSP90、CAT、PR-1a、PAL の 発 現 量 が そ れ
ぞ れ 約 3.7、1.9、1.4、9.7、1.8、2.0 倍 に 増 加 し た が、
HSP27、SOD、PR-2、PR-13 はそれぞれ約 0.4、0.3、0.7、0.2倍に減少した。以上の結果から、
宇宙環境ストレスによって引き起こされるシグナル応答やシグナル因子は他の環境ストレスによって引き起こされるものと異なることが示唆された。

1. Expression of stress/defense-related genes in Mizuna
grown in space
In space, plants are exposed to the extreme environment,
especially space radiation is suspected to induce oxidative
stress by generating high-energy free radicals andmicrogravity would enhance the effect of space radiation.
However, our current understanding of plant growth andto the synergistic effect of radiation and microgravity islimited to a few experiments. In this study, expressionof stress/defense-related genes in Mizuna grown in
the International Space Station (ISS) was analyzed tounderstand the plant responses and adaptation to thespace environment and to develop plants tolerant to stressin space. Seeds of Mizuna were sown in the root moduleof a plant growth chamber LADA onboard the Zvezda
module of ISS and the seedlings were grown under 24h
lighting in the shoot module. After 27 days of cultivation,
the plants were harvested and stored at -80℃ in MELFI
onboard the Destiny module, and were transported to
the ground at < -20℃ in GLACIER onboard the Space
Shuttle. Cultivation under the same conditions was
carried out in LADA on the ground as a control. Total RNA
isolated from leaves was subjected to microarray analysis
using the Agilent Arabidopsis OligoMicroarray (4 x 44k).
Expression levels of 2,193 and 439 genes were increased
and decreased to more than 2-fold respectively in Mizuna
grown in space when compared to those of the control.
Functional categorization of Gene Ontology showed thatabout 26 and 18% of the increased genes are responseto stress and response to abiotic stimulus respectively.
Expression levels of HSP genes, ROS scavenging genes,
and PR genes in Mizuna grown in space were comparedwith those in the control by quantitative RT-PCR. HSP17,
HSP18, HSP90, CAT, PR-1a, and PAL genes in Mizuna
grown in space were increased about 3.7, 1.9, 1.4, 9.7,
1.8, and 2.0 times respectively, whereas HSP27, SOD,
PR-2, and PR-13 genes were decreased about 0.4, 0.3,
0.7, and 0.2 times respectively. These results suggestthat the signal response or signal factor induced by the
space environment is different from that induced by otherenvironmental stresses.

２. ホンモンジゴケの細胞壁の機能解析
ホンモンジゴケ（Scopelophila cataractae）原糸体の細胞重は、正常培地や重金属（銅、亜鉛）含有培地において、培養開始から 90 日目まで直線的に増加した。正常細胞（コントロール）の細胞壁および銅と亜鉛処理細胞の細胞壁中のウロン酸含量は類似していたが、アラビノースとガラクトースの含量は 61 〜 67% に減少した。多数のグリコシダーゼとグルカナーゼ活性が、コントロールと銅処理細胞から調製した緩衝液可溶性蛋白質
画分と塩化リチウム可溶性蛋白質画分に検出された。銅処理細胞の可溶性蛋白質画分中のα-L- アラビノフラノシ
ダーゼとβ- ガラクトシダーゼ活性は約 3 倍に増加した。
これらのことから、重金属処理によって、細胞壁代謝に変化がおきていることが示唆された。

2

2. Analysis of the cell walls of Scopelophila cataractae
Cell mass of Scopelophila cataractae protonema
increased linearly from the start up to 90 d in normal
and heavy metal (Cu and Zn)-enriched culture medium.
Uronic acids were found in similar amounts in both control
and Cu- and Zn-treated cell walls, whereas the amountsof arabinose and galactose decreased to 61 〜 67% in the
Cu- and Zn-enriched cell walls. Several glycosidase andglycanase activities were detected in the homogenates ofcontrol and Cu-treated cells after successive extraction
with the buffer and buffer containing LiCl. The activities ofα-L-arabinofuranosidase and β-galactosidase in thesoluble protein fractions from Cu-treated cells increased
3-fold. These findings suggest that the metabolism of cell
walls of heavy metal-treated cells is different from that of
the control cells.

環境応答機構研究グループ

Group of Environmental Stress Response Systems

本グループでは、高等植物の主に非生物的ストレスの認識および応答機構について、遺伝子レベルから個体レベルまでを、特にこれらに関わる植物ホルモンの作用に注目して研究を行っている。これまでに知られている植物ホルモンの中で、アブシジン酸 (ABA) は、乾燥、塩、
低温応答に関与していることが知られており、現在はABA の応答に関して研究に重点を置いている。今年度の研究成果の一部は以下の通りである。
1．ABA 高感受性変異株の及び ABA 情報伝達因子の解析
発芽時に ABA に高感受性を示すシロイヌナズナ変
異株 ahg2-1, ahg11-1, の解析を行った。昨年度までに
AHG2 及び ahg2-1 の抑制変異遺伝子として同定された
AGS1 はともにミトコンドリアで機能する、それぞれpolyA 特異的 RNA 分解酵素、polyA 付加酵素であることを突き止めた。本年度は、これら因子の更なる詳細な解析、また変異株から抽出したミトコンドリアを用いてのタンパク質の解析を行った。その結果、ahg2-1 変異株
では、ミトコンドリア呼吸に関わる複合体の量が変化していることが判明した。AHG11 は PPR と呼ばれる RNA
修飾酵素をコードしている。本年度の解析から、AHG11はミトコンドリアの nad4 mRNA の一つの RNA 編集に関与していることを明らかにした。ABA 応答に関与す
る PP2C のうち、我々が同定した AHG1, AHG3 は他のPP2C と異なり、核局在と種子特異的発現を示す。このため、他の PP2C とは異なる機能を持つことが予想され、それを明らかにする為に AHG1 を用いた相互作用因子
探索を行った。その結果、転写抑制複合体を構成する因子との相互作用が確認された。このタンパク質と相互作用するもう一つの PP2C 遺伝子の三重変異株の獲得を試みたが、今のところ得られていないので、これら 3 つのPP2C は特異的に重要な機能を持っている可能性が示唆された。
2．気孔の開閉制御機構の解析
シロイヌナズナを用いて、気孔の開閉運動の制御に関わる因子の同定、機能解析を行った。MALDI-TOF 質量分析計を用い、孔辺細胞内で ABA により増加するタン
パク質のひとつがホスホリパーゼ D（PLD）であることを明らかにした。複数存在する PLD 遺伝子のうち PLD
α1 の欠損変異体は ABA による気孔開口阻害が低感受性になっており、PLDα1 と PLDδ の二重欠損体では気孔閉口誘導も ABA に対して低感受性であるなどの PLD の機能分化を明らかとした。

Our group is studying the molecular mechanisms ofenvironmental stress responses, mainly abiotic stressresponse, in plants at levels from gene expression toindividual behavior. Phytohormones such as abscisic acid
(ABA) are deeply involved in the various stress responsesof plants. Currently, our research is focused on the actionof these plant hormones.
1. Analysis of the ABA hypersensitive mutants and ABA
signal transducers
We are analyzing ABA hypersensitive mutants ahg2-1
and ahg11-1 to obtain more insight into ABA response
mechanisms. We previously demonstrated that AHG2and AGS1, which are the products of the suppressor
mutant gene for ahg2-1, function in mitochondria asa polyA specific ribonuclease and a polyA polymerase,
respectively. This year, we analyzed the functions of thesefactors in more detail. We also examined the protein
levels of purified mitochondria and found that the balancein the protein complex is compromised somehow in theahg2-1 mutant. AHG11 encodes a pentatricopeptide
repeat (PPR) protein that is involved in the RNA editingof a mitochondrial mRNA. This year, we identified nad4transcripts as the target of AHG11. AHG1 and AHG3 haveunique features among the protein phosphatase 2C (PP2C)
that are involved in the ABA response; they are localized
in the nucleus and show high expression in seeds. We
found that one component of co-repressor complex
interacted with these PP2Cs specifically. We also identified
another PP2C that interacts with this component. We tried
to establish a multiple disruptant mutant of these three
PP2Cs but have not succeeded, which implies that thesethree PP2Cs have essential functions.
2. Analysis of the stomata regulation system
We have been investigating the regulation mechanismof stomatal movement in response to environmental
stimuli. Phospholipase D (PLD) was identified as a protein
whose quantity was up-regulated by ABA in guard cells
by MALDI-TOF mass spectrometry. Among several PLDs
in the Arabidopsis genome, PLDα1 disruption resulted in
hypo-sensitivity in ABA prevention of stomatal opening,
but not in the closure. On the other hand, the double
disruption of PLDα1 and PLDδ genes showed hyposensitivity in the inhibition of opening and the induction ofclosure.

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土壌環境ストレスユニット（Soil Stress Unit）

植物ストレス学グループ

Group of Plant Stress Physiology

本グループでは植物の必須元素、有益元素及び有害元
素の吸収や集積機構、ミネラルストレスに対する植物の応答反応や耐性機構について個体レベルから遺伝子レベルまで研究を行っている。今年度の研究成果の一部は以下の通りである。

Our group focuses on the mechanisms of uptake andaccumulation of essential, beneficial and toxic minerals,
and tolerant mechanisms of plants to mineral stresses
at different levels from intact plants to genes. Our mainachievements during 2012 are described below.

1．銅の転流に関与するトランスポーターの同定
必須元素である銅の転流に必要な輸送体 OsYSL16 を同定した。OsYLS16 はニコチアナミン−銅複合体の輸送体で、栄養成長期では、根、葉、基部節で、生殖成長期
では葉と節で高い発現を示す。また葉では、維管束付近、節では篩部に局在する。OsYSL16 遺伝子を破壊すると、古い葉から新しい葉への銅の転流が減少し、止葉から穂への銅の転流も減少した。したがって、OsYSL16 は篩部輸送を介して、銅を古い組織から新しい組織や穂へ届けるために必要な輸送体である。

1. Identification of a transporter for Cu distribution
We identified a transporter for distribution of Cu inrice. OsYSL16 is a transporter for Cu-nicotianaminecomplex. OsYSL16 was expressed in the roots, leaves,and unelongated nodes at the vegetative growth stage andhighly expressed in the upper nodes at the reproductive
stage. OsYSL16 was localized at the phloem of nodes andvascular tissues of leaves. Knockout of OsYSL16 resulted
in decreased translocation of Cu from old leave to newleaves, and from flag leaf to panicles.

2．アルミニウム耐性の分子機構
オオムギのアルミニウム耐性遺伝子 HvAACT1 はその上流の約 1000 塩基対（1kb）の挿入によって発現が制御されていることを突き止めた。この挿入は、プロモーターの役割を果たし、HvAACT1 の発現量を増加させるだけ
でなく、発現部位を根の中心柱から根端へ変化させた。
またこの挿入は酸性土壌に適応した品種にしか存在しなかった。
イネのアルミニウム耐性に関して、細胞膜に局在する
マグネシウム輸送体 OsMGT1 の発現上昇が寄与していることを突き止めた。また OsMGT1 は転写因子 ART1 の制御下にあった。

2. Molecular mechanisms of aluminum tolerance
We found that 1-kb insertion in the upstream of Altolerance gene HvAACT1 regulates its expression inbarley. This insertion functions as a promoter, which
not only enhances the expression of HvAACT1, but alsochanges the expression location to the root tips. The
insertion was only found in cultivars that have adapted toacid soils.
We found that up-regulation of a plasma membranelocalized Mg transporter OsMGT1 conferred Al tolerance
in rice. OsMGT1 expression is regulated by a transcription
factor ART1

3．マンガン、カドミウム輸送体の同定
Nramp ファミリーに属する OsNramp5 がイネのマンガン及びカドミウム吸収に関わる主な輸送体であることを明らかにした。OsNramp5 は主に根で発現しており、その発現レベルはマンガンの過剰や欠乏に影響されず恒常的であった。OsNramp5 タンパク質は根の外皮と内皮細胞の遠心側に極性局在をしていた。OsNramp5 遺伝子を破壊すると、マンガンだけではなくカドミウムの吸収もほとんどなくなった。わら及び玄米中のマンガンとカ
ドミウムの濃度は破壊株で大幅に低下し、また籾収量も低下した。

3. Identification of a transporter for Mn and Cd
We found that OsNramp5, a member of Nramp family,
is a major transporter for Mn and Cd uptake in rice.
OsNramp5 was mainly expressed in the roots and its
expression was unaffected by either Mn deficiency orexcess. OsNramp5 was localized on the distal side of both
exodermis and endodermis in the roots. Knockout of
OsNramp5 resulted in decreased Mn uptake as well as Cd
uptake. Subsequently, the concentration of both Mn and
Cd in the grain and straw was remarkably reduced.The
grain yield was also decreased.

4．オオムギのケイ素の分配に関与するトランスポーターの同定
オオムギの地上部でのケイ素の分配に関わる輸送体
HvLsi6 と HvLsi2 を同定した。HvLsi6 は栄養成長期では葉身や葉鞘の木部柔細胞で極性分布し、導管からのケイ酸の積み下ろしの役割をしていると考えられる。また生殖成長期では、節の木部転送細胞に極性分布し、隣接する柔細胞に局在する HvLsi2 と共同でケイ酸の肥大維管束から分散維管束への維管束間輸送に機能していることを明らかにした。

4. Identification of transporters involved in Si distribution
in barley
We identified two transporters (HvLsi6 and HvLsi2)
responsible for Si distribution in the shoot. HvLsi6 waspolarly localized in the xylem parenchyma cells of leaves,
implicating that HvLsi6 is involved in the xylem unloadingof Si. At the reproductive stage, HvLsi6 and HvLsi2 werepolarly localized in the xylem transfer cells and adjacentparenchyma cell layer of the node, respectively, suggestingthat they are involved in the intervascular transfer of Si.

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植物成長制御グループ

Group of Plant Growth Regulation

酸性土壌において植物の生育を阻害するアルミニウ
ム（Al）イオンに着目し、毒性機構と耐性機構を解析している。毒性機構の詳細は、植物細胞のモデル系である培養細胞を用いて解析し、Al によって誘発される活性酸
素種（ROS）が細胞死に関わることから、ROS の誘発と抑制機構についてエネルギー代謝の面から解析を進めている。一方、Al 耐性機構に関しては、コムギの主要な耐性遺伝子である ALMT 遺伝子の機能ならびに構造解析を進めるとともに、ALMT 遺伝子が植物にのみ存在する
ユニークな遺伝子ファミリーを形成していることから、様々な ALMT 相同遺伝子の機能解明をめざしている。本
年度の研究内容は次の通りである。

Our research has been focused on aluminum (Al) ion, amajor inhibitory factor of plant growth in acidic soils, andanalysis of the mechanisms of Al toxicity and tolerance,
using a cultured cell system and whole plants. Since Alenhanced production of reactive oxygen species (ROS)
is related to cell death, the production mechanism of
ROS as well as the mechanism of protection from ROS
have been examined, focusing on energy metabolism. For
Al-tolerance mechanism, the functional and structuralfeatures of the ALMT gene, a major Al tolerance gene inwheat, have been studied. In addition, since the ALMT
gene and its homologues have been found only in plants,
we are trying to elucidate the functions of individual
ALMT genes. Our research in 2012 is outlined below:

1．エネルギー代謝のアルミニウム耐性機構への関わり
タバコ培養細胞株 SL を Al で処理すると、ミトコンド
リアの機能阻害に連動して ROS を生成する。一方、SL株より選抜した Al 耐性細胞株は、Al 処理に伴う ROS の生成が強く抑制されている。糖代謝経路において、ピルビン酸から乳酸発酵、エタノール発酵、TCA 回路へと 3方へ分かれる各々のステップを触媒する鍵酵素の比活性を比較した結果、野生株と比較して、Al 耐性株は、乳酸発酵への依存度を高め TCA 回路を抑制することで、ミトコンドリアでの酸化的リン酸化に伴う ROS 生成を抑制している可能性が示唆された。

1. Aluminum tolerance mechanism related to energy
metabolism
Cultured tobacco cell line SL produces ROS under Al
stress, which is related to mitochondrial dysfunction.
On the other hand, the Al-tolerant cell line ALT301
isolated from SL seldom produces ROS under Al stress.
The activities of three key enzymes working at each stepfrom pyruvate to either lactate fermentation, ethanol
fermentation or TCA cycle were examined. Comparedto SL, ALT301 exhibits higher enzyme activity of lactate
fermentation, but a lower activity towards TCA cycle,
These results suggest that the Al-tolerant cell line avoids
ROS production under Al stress by a shift of energy
metabolism pathway from mitochondrial oxidative
phosphorylation to lactate fermentation.

2．植物細胞におけるアルミニウムによる細胞死誘発機構の解析
植物細胞における細胞死の誘発機構には、少なくともミトコンドリア経由と液胞経由がある。本研究では、液胞に局在しプログラム細胞死への関わりが報告されている Vacuolar Processing Enzyme (VPE) に着目し、Al による細胞死への関わりを、タバコ培養細胞株 SL を用いて解析した。VPE 遺伝子の発現 ならびに VPE 酵素活性について調べたが、何れも Al の影響を受けなかった。従って、SL 細胞株における Al による細胞死は、液胞経由ではなくミトコンドリア経由の可能性が高いと思われる。
3．アルミニウム活性化型 ALMT1 輸送体の機能向上を目指した遺伝子改変
コムギの Al 活性化型リンゴ酸輸送体（TaALMT1）と同様に、シロイヌナズナの相同タンパク質 AtALMT1 もAl 活性化型であることが報告されている。ALMT 輸送体
機能改変を目的に、両遺伝子の N 末端側の膜貫通領域（NT ドメイン）と C 末端側の親水性領域（CT ドメイン）を相互に入れ換えたキメラタンパク質を作成し、リンゴ
酸輸送活性を、アフリカツメガエル卵母細胞を用い電気生理学的に解析した。Al による活性化は、TaALMT1 ではみられたが、AtALMT1 では検出出来ず、さらに、NTを TaALMT1、CT を AtALMT1 にしたキメラタンパク質
Ta::At では、TaALMT1 よりも高いリンゴ酸輸送活性がみられたが、逆に At::Ta では Al 活性化が認められなかった。これらの結果から、AtALMT1 の NT ドメインが、Al活性化の律速になっていると考えられる。

2. Mechanism of Aluminum-induced Cell Death in Plant
Cells
Programmed cell death in plant cells is known to be
induced by at least two different pathways, mitochondrial
pathway and vacuolar pathway. The latter pathway
involves the vacuolar processing enzyme (VPE) which islocated in vacuole and is reported to cause programmed
cell death. In this study, the possible involvement of VPE
in Al-induced cell death was investigated in tobacco cellline SL. Neither the expression of the VPE genes nor
VPE enzyme activity were affected by Al. These results
suggest that Al-induced cell death in SL could be via themitochondrial pathway, and not the vacuole pathway.
3. Modification of the ALMT transporters for effective
aluminum activation
Aluminum (Al)-activated malate transporter of wheat(TaALMT1) consists of the hydrophobic amino-terminal(NT) domain half, with transmembrane region andthe hydrophilic carboxyl-terminal (CT) domain half. A
homolog of Arabidopsis, AtALMT1, was also reported to
be an Al-activated transporter having a structure similar
to that of TaALMT1. Using these ALMTs, we prepared
the chimera constructs with NT- and CT-domain halves
replaced by CT and NT-domain halves, respectively, andanalyzed the electrophysiological properties, focusing on
Al activation in Xenopus oocyte. The transport activityof TaALMT1 was highly activated by Al as reported
previously, while that of AtALMT1 was seldom activatedin our system. In the chimeric proteins, the Al-activation
was higher in Ta::At than in TaALMT1, but not determinedin At::Ta. These results suggest that the NT domain half of
AtALMT1 limits the Al-activation of the malate transport
in the oocyte system.

5分子生理機能解析グループ

Group of Molecular and Functional Plant Biology

本グループでは、植物細胞の環境ストレス応答機構を
分子生物学、細胞生物学、生理学的に研究している。現在は植物細胞の水輸送機能とアクアポリン、イオン輸送
系について研究を進めている。水と低分子中性化合物の膜透過を担っているアクアポリンは原形質膜型（PIP）
や NOD-26 型（NIP）などにクラス分けされる。イオン
チャネル Cyclic nucleotide-gated channel (CNGC) は塩ス
トレス環境でのイオン輸送に関与していると考えられている。以下に今年度の成果概要を述べる。
１．高流束アクアポリン
逆浸透膜による脱塩は水不足解決する有力な方法である。アクアポリンを利用した逆浸透膜の実用化に成功した例はまだないが、高性能の逆浸透膜が期待できる。本
研究では一つのアミノ酸を置換した変異 HvPIP2;4 において水透過性が大きく増加することを見つけた。この知見は将来の逆浸透膜の高性能化に寄与するであろう。
２．NIP アクアポリンの輸送特性解析
イネとオオムギのアクアポリン遺伝子をヒ酸感受性
変異体酵母（ΔACR3 株）で発現させてスクリーニング
し た 結 果、 新 奇 に OsNIP3;3、HvNIP1;2、HvNIP2;2 が亜ヒ酸（As(OH)3）輸送活性をもつことが認められた。
HvNIP2;2 はホウ酸輸送活性が知られていたが、解析の結 果 上 記 3 つ の NIP の う ち で は OsNIP3;3 が 最 も 強 い
ホウ酸輸送活性も持つことが認められた。また輸送特異性の分子機構を調べるために HvNIP2;2G216M および
HvNIP2;2G216Y を作成した。これら変異株ではホウ酸輸
送活性は変化せず亜ヒ酸輸送活性のみ低下していた。
３．PIP アクアポリンによる形質転換イネの発現および機能解析
水耕栽培した 24 日齢のイネにおいて、浸透圧ストレス（20％ PEG、-0.5 MPa）によってイネ PIP mRNA 量の総量は減少した。しかし根の水透過性（Lpr）は浸透圧
ストレスによる変化は見られなかった。根で全 PIP の発現が低下している形質転換イネ系統の Lpr は野生型のものと比べて有意な低下は認められなかった。このようなmRNA 量と Lpr の食い違いは、PIP タンパク質のリン酸
化 / 脱リン酸化の状態の違いによるのかもしれない。
４．オオムギ CNGC の同定と HvCNGC2-3 の能解析
CNGC ファミリーの遺伝子をオオムギから複数単離した。その中で HvCNGC2-3 においては、一般に CNGC で
は GQGL として保存されているイオン選択フィルターが AQGL であった。アフリカツメガエル卵母細胞に発現させて電気生理学的に調べたところ、HvCNGC2-3 は他の CNGC と異なり Cl- を輸送性している可能性が示唆された。オオムギにおいては HvCNGC2-3 の発現は塩ストレスで増大した。塩ストレス感受性の酵母変異体 G19 に
HvCNGC2-3 を導入すると G19 のストレス耐性が強化された。

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We have been conducting molecular, cellular, and physiological studies on the responses of plant cells to environmental stress. Now we focus on the water transport
activity, aquaporins and ion transporters. Aquaporins aremembrane proteins transporting water and low weightneutral molecules, and sub-classified into PIP (plasmamembrane type), NIP (Nodulin-26 like), and others. Cyclic
nucleotide-gated channels (CNGCs) are ion transporters
and suggested to be a gate of ion influx into cells in salt
stress. The results of our research for the current year are
summarized here.
1. A high-flow aquaporin
Water desalination via reverse osmosis (RO) technology provides a solution to the world s water shortage
problem. Compared to such artificial membrane, biologicalmembranes are frequently shown to exhibit much higher
rate of the flux due to the presence of aquaporins. An idea
was proposed that aquaporins can be used as pores of RO
membranes to get a higher flow rate. We found that a mutant of HvPIP2;4 exhibits markedly higher water transport
activity. The discovery might help enhance the flux of future RO membranes.
2. Transport activities of NIP aquaporins
Rice and barley aquaporins were screened using Assensitive yeast (ΔACR3 line). As a result, newly OsNIP3;3,
HvNIP1;2, HvNIP2;2 were identified as NIPs having Astransporting activity. Because HvNIP2;2 was previously
reported to be a boron transporter, we examined B-transporting activity in these NIPs. Among them, OsNIP3;3
showed the strongest B-transporting activity. To investigate the molecular mechanism of the substrate selectivity,
we generated HvNIP2;2G216M and HvNIP2;2G216Y. Astransport activity was reduced but B-transporting activity
was not changed in these mutants.
3. Expression and functional analysis of rice plants transformed with PIP genes
In 24-day-old rice plants grown by hydroponics, expression of all rice PIP, except OsPIP1;1, was up-regulated
in roots under osmotic stress (20% PEG, -0.5 MPa).
However, no significant difference was found in the root
hydraulic conductance (Lpr) between the plants undernormal and osmotic stress conditions. In a transgenic riceline in which all endogenous PIP genes were downregulated in roots, no significant decrease in Lpr was detected.
Such a discrepancy between the amounts of mRNAs ofaquaporins and Lpr may be explained by phosphorylation/dephosphorylation.
4. Identification of CNGCs in barley and functional analysis of HvCNGC2-3
Genes of CNGC members in barley were newly identified. We found that HvCNGC2-3, a one of barley CNGCs,
has a unique motif of AQGL , an ion selective filter thatis GQGL in other plant CNGCs. Electrophysiologicalmeasurements using Xenopus oocytes indicated that
HvCNGC2-3 can transport Cl-. This substrate selectivity is
unique among plant CNGCs. In barley plants, HvCNGC2-3
expression was enhanced by salt stress. Introductionof HvCNGC2-3 into a salt-stress-sensitive yeast mutant(G19) improved the salt tolerance in G19.

環境生物ストレスユニット（Biotic Stress Unit）

植物・微生物相互作用グループ

Group of Plant-Microbe Interactions

植物の生育は、病原微生物あるいは共生微生物との相互作用により大きく影響を受ける。本グループでは、いくつかの選択された系でそれらの相互作用を分子、細胞、個体レベルで解析している。以下に本年の成果を記す。

Plant growth is influenced by various microorganisms
including mutualistic and pathogenic ones. Our groupexplores, at molecular, cellular and individual levels, theinterplays of mutualistic and pathogenic microorganisms
occurring in some selected plant/microorganism systems.

１．菌類で発見されたマイナス鎖 RNA ウイルス
菌類ウイルスは主な菌類のグループ（子のう菌、担子菌等）で広く見つかる。これまで発見・性格付けが行われた菌類ウイルスは 2 つのグループ、2 本鎖 (ds)RNAをゲノムに持つウイルスとポジティブ（ゲノム RNA に
ORF が存在）1 本鎖 (+)(ss)RNA をゲノムにもつウイル
スに大別される。最近の大規模な植物病原糸状菌からのウイルスの探索により、これらグループに加え、ssDNA
ウイルスも 2010 年に報告された。しかし、他の界の宿主（動物、植物）で数多く報告されている (-)（ゲノム
相補鎖に ORF が存在）(ss)RNA ウイルスは菌類から未報告であった。本研究では、(-)(ss)RNA ウイルスが植物
病原糸状菌に感染している（た）ことを示す結果を 2 つ得た。1 つ目は、代表的なマイナス鎖 RNA ウイルスの配列を用いたデータベース検索を結果、(-)(ss)RNA ウイル
スの類似配列が、植物病原糸状菌であるエンドウうどん
こ病菌（Erysiphe pisi）の whole-genome shotgun コン
ティグ配列上に見つかった。このウイルス様配列は非分
節型の (-)(ss)RNA ウイルス（モノネガウイルス目）がコードする複製酵素 (L) の一部領域に相同性を示したこと か ら、EpMLLS（Erysiphe pisi mononegavirus L-likesequence）と名付けた。これらの配列断片はうどんこ病
菌ゲノム DNA から PCR で増幅され、本菌の宿主植物であるエンドウ（Pisum sativum）のゲノム DNA では増幅されないことから、菌ゲノム由来の配列、すなわち古代 (-)(ss)RNA ウイルスウイルスの化石配列）と確認された。2 つ目は、芝類の病原子のう菌である Sclerotinia
homoeocarpa では、L 遺伝子全域をカバーする 7.7 千〜
9.8 千塩基の transcriptome shotgun アッセンブリ（TSA）
配列が存在した。L タンパク質の RdRp コア領域を用いた分子系統解析では、EpMLLS ならびに TSA 配列は現在のモノネガウイルス種とは明らかに異なるクレードを共に形成した。以上から、菌類ゲノムにマイナス鎖 RNA
ウイルスの化石配列情報の存在が確認され、さらにウイルス様転写物の存在は現存するマイナス鎖 RNA ウイル
スの感染を強く示唆した。
２．植物共生メタノール資化性菌の多様性と植物生長への影響
植物は地球上で年間 1 億トンに達するメタノールを放出しており、植物の表面にはこのメタノールを資化する
Methylobacterium 属細菌が多く存在する。本属細菌には植物の生育促進作用があることが知られているが、菌と植物との種レベルでの相互作用の特異性は分かっていない。そこで多くの植物種から多様な本属細菌を分離し、微生物同定の最新手法である質量分析器を用いた同定を行い、本属細菌の詳細な分類と植物との相互作用特異性を解析し、新種の菌 M. oxalidis と M. gnaphalii について新種提唱した。また生育促進効果の高い菌をスクリーニングし、そのゲノム配列を解析し、生育促進効果に関わる遺伝子の同定を行っている。さらに、本属細菌がメ
タノール生育時に合成する化合物に、植物の気孔を開く
活性があることを発見した。現在この生物学的な意義を検討中である。

1. Evidence for negative-strand RNA virus infection infungi.
Fungal viruses comprise two groups: a major group of
five families with double-stranded RNA genomes anda minor group with positive-sense single-stranded (ss)RNA genomes. Although many fungal viruses have been
identified, no negative-stranded (-)ssRNA mycoviruseshave been reported. Here we present two lines ofevidence suggesting the presence of (-)ssRNA viruses infilamentous fungi based on an exhaustive search using
extant (-)ssRNA viruses as queries. This revealed (-)
ssRNA virus L protein-like sequences in the genome ofa phytopathogenic obligate ascomycete, Erysiphe pisi,
designated as EpMLLS（E. pisi mononegavirus L-likesequence）. A similar search for (-)ssRNA viruses
in fungal transcriptome shotgun assembly libraries
demonstrated that two independent libraries from
Sclerotinia homoeocarpa, another phytopathogenic
ascomycete, contained several sequences considered
to correspond to the entire mononegavirus L gene andlikely originating from an infecting (-)ssRNA virus. The
sequences were termed ShTAS-L (S. homoeocarpa
transcriptome shotgun assembly L-like sequence).
Phylogenetic analysis based on amino acid alignment of
their L and L protein-like sequences placed EpMLLSs
and ShTAS-Ls into a distinct clade from other (-)
ssRNA viruses within the Mononegavirales (fourfamilies Bornaviridae, Filoviridae, Paramyxoviridae andRhabdoviridae and the proposed genus Nyavirus) with
undivided genomes. These results provide strong evidence
for both ancient and extant (-)ssRNA virus infections infungi. This study provides an interesting insight into thetaxonomy of mononegaviruses.
2. Diversity of methylotrophs symbiotic to plants and theireffect on plant growth.
Plants emit methanol, the amount of which reaches
as much as 100 million tons annually. There are many
bacteria that assimilate methanol on the plant surface,
including Methylobacterium species as one of the most
predominant species. Although it is known that they arecapable of promoting plant growth, the species-species
specificity of interaction between them and plants is
not well understood. We isolated up to one thousand
Methylobacterium strains from various plants, and wehave investigated plant/bacteria interaction profiles using
a high-throughput bacterial identification method, which
utilizes MALDI-TOF/MS. We found a number of new
species, and proposed M. oxalidis and M. gnaphalii asnovel species. We have also been screening for strains thathave strong plant-growth promoting ability for important
crops. We are now investigating the genes involved inplant growth promotion, using the genome sequenceof a candidate strain. Furthermore, we have found thatcompounds that methanol-grown Methylobacterium
sp. synthesizes are able to enhance plant stomatal
opening. Investigation of the biological significance of thephenomenon is underway.

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植物・昆虫間相互作用グループ

Group of Plant-Insect Interactions

我々は 2 つの課題に取り組んでいる。⑴イネの植食性昆虫に対する防御における植物ホルモン、遺伝子、代謝物の役割、⑵殺虫剤抵抗性管理と天敵保護に基づく総合的害虫管理。本年度の研究の成果は以下の通りである。

We have been focusing on two main topics: (1) the roleof plant hormones, genes and metabolites in defense ofrice against insect herbivores, and (2) integrated pest
management (IPM) using insecticides as well as natural
enemies. Our results include:

1.1. イネ害虫の解析
我々は咀嚼性および吸汁性昆虫イネ害虫 4 種を維持している。咀嚼性昆虫の口腔分泌物を採取し人工的に植物の傷口に投与するシステムを開発した。このシステムをイネにおけるホルモン、代謝物、遺伝子発現の変化の解析に利用した。
1.2. ホルモンおよび代謝物の変化
我々はイネの傷口へ口腔分泌物を投与すると高いレ
ベルの植物防御ホルモン（ジャスモン酸と jasmonoyl-Lisoleucine）が誘導されることを見出した。このことは口腔分泌物中にはエリシターが含まれていることを示唆する。同様に、口腔分泌物を処理されたイネ葉は、より多くの防御代謝物を蓄積することによって植食性昆虫に対処していることも見出した。昆虫由来のエリシターおよ
びイネの受容体の単離、同定が今後の課題である。
1.3. 植食性昆虫に応答する遺伝子の検出
我々はマイクロアレイ解析を行い、傷処理および口腔分泌物処理によって誘導される多数の遺伝子を検出した。速やかに誘導され、イネの防御遺伝子を制御すると考えられるいくつかの転写因子について現在解析中である。
2.1. 害虫の殺虫剤抵抗性機構の解析
殺虫剤抵抗性害虫の発生が農業生産の現場において大きな問題になっている。殺虫剤抵抗性機構を解明することは害虫管理において非常に重要である。我々はアブラ
ナ科作物の害虫であるコナガのピレスロイド剤抵抗性に関わるナトリウムチャネルのアミノ酸変異の頻度を日本、中国、タイの系統を用いて明らかにした。また、果菜類の害虫であるミナミキイロアザミウマのピレスロイ
ド剤抵抗性にはナトリウムチャネルのアミノ酸変異による感受性の低下とチトクローム P450 による解毒分解
酵素活性の増大の両方が関与していることを明らかにした。
2.2. 草刈がモモ圃場の昆虫相に及ぼす影響の解析
草刈は野外に生息する昆虫類に大きな影響を及ぼす撹
乱要因であるが、具体的な影響について調べられたことはなかった。我々はモモ圃場においてピットホールト
ラップを用いて草刈前後の昆虫相を調べ、種数と個体数
は除草後 5 日目まで増加し、その後除草前の水準に戻る
こと、増加の主要因はアリとオサムシであることを明らかにした。
2.3. LED と水盤トラップを用いたキノコバエの誘殺ト
ラップの開発シイタケ栽培施設におけるキノコバエの大発生が問題になっているが、有効な殺虫剤は登録されていない。我々はキノコバエの誘殺に有効な水盤トラップの開発を目指しており、これまでにキノコバエは紫外線 LED に誘引されること、水盤トラップへの界面活性剤添加がキノコ
バエ、特にクロバネキノコバエ類の誘殺に有用であることを明らかにした。

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1.1. Characterization of rice herbivores
We maintain the cultures of four insect herbivores ofrice, including chewing and sucking insects. For chewing
herbivores, we developed an artificial system to collectoral secretions (OS) and apply them to plant wounds. Thissystem was utilized to analyze hormonal, metabolic andgenetic changes in rice.
1.2. Determination of hormonal and metabolic changes
We found that the presence of OS in wounds of rice
induces higher levels of plant defense hormones jasmonicacid and jasmonoyl-L-isoleucine, suggesting that an active
insect elicitor was present in OS. Similarly, leaves treatedwith OS accumulated more defense metabolites compared
to control leaves, further corroborating the ability of rice
to respond to herbivore presence. Our next focus is on
isolation and identification of insect elicitors and their
receptors in rice.
1.3. Identification of herbivory-responsive genes
We performed a microarray experiment and identified
a large number of genes induced by wounding andtreatment with insect elicitors (OS). Several transcription
factors which are rapidly induced and may regulate rice
defense genes are now under investigation.
2.1. Analyses of insecticide resistance mechanisms
Insecticides are used as a principal means of protecting
crops. Therefore, basic knowledge of insecticide
resistance is one of the most important subjects related
to crop protection. We showed that frequencies of theamino acid mutations in the sodium channel are involvedin pyrethroid resistance of the diamondback moth
(Plutella xylostella) obtained from China, Thailand, andJapan during 2009–2011. We also found that pyrethroid
resistance of the melon thrips (Thrips palmi) isconferred by both, reduced sensitivity of the sodium
channel and cytochrome P450 mediated detoxification.
2.2. Effects of mowing on insect communities in Japanesepeach orchards
Mowing is one of the most common disturbances
to invertebrates in the field including fruit orchards.
However, almost no information exists on impact ofmowing on the insects. We examined the effects ofmowing on population dynamics and community structureof insects in peach orchards using pitfall traps. Our results
showed that species richness and trap catches increased
up to 5 days after mowing, and then return to their originallevels. Increased species richness and trap catches weremainly attributable to the increase of ants and carabids.
2.3. Development of water-pan traps with LED to control
mushroom flies
Because no insecticides are registered in the sawdustbased cultivation of shiitake, Lentinula edodes, we areaiming to develop a water-pan trap system to control
mushroom fly pests. We found that mushroom flies are
attracted to ultraviolet LED, and that the addition of
surfactant on the water-pan trap is useful for efficient
capture of flies, especially for Sciaridae.

遺伝資源ユニット（Genetic Resources Unit）

ゲノム多様性グループ

Group of Genome Diversity

ゲノム多様性グループでは、実験系等を含む栽培オオ
ムギ約 14,000 系統と野生オオムギ約 600 系統を保有し、⑴種子の増殖、遺伝的多様性の評価、⑵特性データのデー
タベース化、種子配布等の系統保存事業、⑶ゲノム解析の諸手法を使ったオオムギ遺伝資源の機能開発に関する研究に取り組んでいる。

We have preserved ca. 14,000 accessions of cultivatedbarley including experimental lines and ca. 600 accessionsof wild relatives. The subjects of our research are (1)evaluation of genetic diversity and characteristics,
construction of the barley resource database and sample
distribution to the users worldwide, (2) collection andpreservation of barley germplasm and (3) efficient use of
the resources for genome analysis including expressedsequence tag (EST), molecular markers and DNA libraries
to study the genome-based barley diversity and thegenetic analysis of important traits in barley.

１．オオムギ遺伝資源の評価(a) 休眠性の QTL 解析
穂発芽性の育種的な対応の一つとしての利用が期待されるオオムギの休眠性の遺伝解析を目的とし、染色体組
換置換系統（RCSL）に由来する大規模分離集団を用いて 5HL 染色体上の QTL(Qsd1) の遺伝子候補を同定した。
現在この遺伝子の形質転換および機能解析を行っている。
(b) 播性程度の種内変異．
栽培オオムギ 5,214 系統の播性程度低温要求度（播性程度）について、起源中心である中近東を境に栽培オオ
ムギの播性程度は、東西で大きく分化していることを見出した。これら知見から、栽培オオムギは伝播の過程で多様な播性程度を持つ系統群を分化させたことが示唆された。
２．オオムギリソースの分譲・配布
ナショナルバイオリソースプロジェクトによってオオ
ムギ種子、cDNA, BAC ライブラリーの配布事業を担っている。
(a) 系統種子の配布
在来系統を中心とするオオムギ種子の配布を行った。
(b) cDNA クローンの配布
独自に開発したオオムギ EST および完全長 cDNA への国内外からのリクエストに対しての分譲業務を実施している。
(c) BAC クローンおよびライブラリーの分譲
独自に作製した国産の醸造用オオムギ品種「はるな二条」を材料として作製した BAC ライブラリーの各クロー
ン、選抜用プール DNA、高密度フィルターおよびライブラリーの全クローンセットについて、国内外の研究者のリクエストに応じて分譲した。
３．オオムギのゲノム解析
いくつかの研究資金を受けて国際オオムギゲノムシー
クエンスコンソーシアム（IBGSC）に参画して、オオム
ギゲノムの物理地図、遺伝地図を統合・整列し、オオム
ギゲノム配列における遺伝子領域の構造と機能を公表した。現在、これまでに開発した全長 cDNA リソース情報を統合したゲノムアノテーションを進めている。

1. Evaluation of barley genetic resources(a) Quantitative trait locus (QTL) analysis of barley seed
dormancy
A candidate of barley seed dormancy QTL (Qsd1) on
the long arm of chromosome 5H, which may be associatedwith pre-harvest sprouting in small grains including
barley, was identified using a large segregating population
derived from recombinant chromosome substitution lines(RCSL). The transformation and functional analysis of thiscandidate are underway.
(b) Natural variation of barley vernalization requirement.
We analyzed the natural variation and geographic
distribution of vernalization requirements using 5,214
barley accessions collected worldwide. We revealed thebiased geographic distribution pattern of vernalization
requirements in an entire collection of domesticatedbarley. This evidence implied that the barley accessions
might be a genetically differentiated groups derived foran evolutionary reason, resulting in adapting to the local
climatic conditions.
2. Collection and distribution of barley resources
In addition to seed samples, cDNA and bacterial artificial
chromosome (BAC) clones (including individual clones,
pooled BAC DNA for screening, high-density replica
membranes and complete clone set of barley) were
distributed with the support of the National BioResource
Project (NBRP).
3. Barley genome analysis
We have been participating in The International Barley
Sequencing Consortium to sequence barley genome withfinancial support from several sources, and have published
an integrated and ordered physical, genetic and functionalsequence resource that describes the barley gene-spacein a structured whole-genome context. We are annotating
the barley genome sequence with comprehensive fulllength cDNA resources.

9遺伝資源機能解析グループ

Group of Genetic Resources and Functions

本グループではオオムギおよびコムギの種子成分に関わる遺伝子の機能について個体レベルから遺伝子レベルで解析している。今年度の研究成果の概要は以下の通りである。

Our group has been conducting molecular genetic
analysis of mutants in wheat and barley paying special
attention to plant morphology and grain quality. Our mainachievements during 2012 are described below.

１．オオムギの短芒遺伝子 lks2 の単離と解析
芒はイネ科に固有の器官で小穂の外頴の先端部が伸長したものとされ、種子の散布や埋土および光合成に重要な役割を担う。オオムギは一般に長芒を有するが、短芒変種もある。自然変異由来の短芒遺伝子 lks2 は芒を
約 50% 短縮する作用を持ち、分布は東アジアに限られる。ポジショナルクローニングにより、Lks2 は SHORTINTERNODES (SHI)- ファミリー転写因子であることを
明 ら か に し た。 対 立 性 検 定 か ら、lks2 は unbranchedstyle 4 (ubs4) お よ び breviaristatum-d (ari-d) と 同 座であるが、後二者では芒長と雌ずい毛が極端に減少する。
Lks2 座の人為突然変異体 25 系統全てが SHI 遺伝子内に突然変異を有していた。Lks2 は芒および雌ずいで強く発現していた。芒の組織学的観察から、lks2 は細胞数の減少のため芒長が短縮していた。自然突然変異によって生じた lks2 は 3 タイプに分類されたが、いずれのタイ
プも IGGH ドメイン内の 245 番目のアミノ酸をプロリン
からロイシンに変化させる一塩基多型を共通に持ち、このために、人為的に誘発された 25 変異アレルに比べて、芒と雌ずいの柱頭毛に与える悪影響が少ない有用アレルになったとみられた。中国以東とヒマラヤでみられた自然発生 lks2 アレルの間には 6 箇所も塩基配列が異なることから、両者は独立起源と思われる。本研究の結果から、lks2 は降雨の多い東アジア地域への適応に有利であったことが示唆される。

1. Molecular cloning and characterization of the short awn
2 gene in barley
The awn, an apical extension from the lemma of the
spikelet, plays important roles in seed dispersal, burial,and photosynthesis. Barley typically has long awns, but
short awn variants exist. The short awn 2 (lks2) gene,which produces awns of about 50% shorter, is a naturalvariant that is restricted to Eastern Asia. Positional cloning
revealed that Lks2 encodes a SHI-family transcription
factor. Allelism tests showed that lks2 is allelic tounbranched style 4 (ubs4) and breviaristatum-d(ari-d), for which phenotypes are very short awn andsparse stigma hairs. The gene identity was validated by 25
mutant alleles with lesions in the Lks2 gene. Lks2 is highly
expressed in awns and pistils. Histological observationsof longitudinal awn sections showed that lks2 short awn
results from reduced cell number. Natural variants of lks2
were classified into three types, but all shared an SNP thatcauses a proline-to-leucine change at position 245 in the
IGGH domain. All three lks2 natural variants are regarded
as weak alleles because their awn and pistil phenotypes
are mild compared with those of the 25 mutant alleles.
Natural variants of lks2 found in the east of China andthe Himalayas had considerably different sequences in
the regions flanking the critical SNP, suggesting their
independent origins.

２．オオムギのプロアントシアニジンの合成に関わる
Ant28 遺伝子の単離と種子休眠への影響
オオムギではビールの濁りや品質低下を引き起こすプ
ロアントシアニジンを低減する目的で突然変異原処理によりアントシアニンまたはプロアントシアニジンを欠く
突然変異体（ant）が 30 遺伝子座も誘発されている。しかし、遺伝子が特定されたのは一部のみである。本研究ではコムギの穀粒色を決定する R-1 遺伝子の有力な候補
遺伝子である Tamyb10 の配列を参考に、オオムギのオー
ソログを PCR で単離した。オオムギで誘発された ant28
突然変異体の Hvmyb10 をシーケンスしたところ、全 6
系統で非同義置換がみつかった。さらに、ant28-494 とスカイゴールデンの F2 でマッピングを行ったところ、
ant28-494 と Hvmyb10 は共分離し、3H 染色体長腕末端部に位置した。これらの結果から、Ant28 は Hvmyb10（R2R3 MYB ドメインタンパク）をコードし、コムギのTamyb10 が粒色決定に働くことが立証された。オオム
ギの ant28 突然変異体は穀粒を炊飯したときに褐変しな
い利点はあるものの、原品種に比べて種子休眠性が低下する。本研究から、Hvmyb10 がオオムギの種子休眠を支配する鍵因子であることが示された。

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2. Ant28 gene for proanthocyanidin synthesis encoding
the R2R3 MYB domain protein (Hvmyb10) highly affects
grain dormancy in barley
A number of anthocyanin- and proanthocyanidinfree mutants (ant mutants) of barley were induced
and selected because of breeding interest to reduce
proanthocyanidins, which could cause haze and degrade
the quality of beer. Ant loci, known as anthocyanin orproanthocyanidin synthesis genes, are classified into
Ant1 to Ant30 through allelism tests. However, only
the Ant18 gene has been molecularly shown to encode
dihydroflavonol 4-reductase (DFR), which is involved inboth anthocyanin and proanthocyanidin synthesis. In thisstudy, an R2R3 MYB gene of barley was isolated by PCR
and named Hvmyb10 due to its similarity to Tamyb10of wheat, which is a candidate for the R-1 gene, a graincolor regulator. The predicted amino acid sequences of
Hvmyb10 showed high similarity not only to Tamyb10
but also to TT2, the proanthocyanidin regulator of
Arabidopsis. Nonsynonymous nucleotide substitutions in
the Hvmyb10 gene were found in all six ant28 mutantstested. Mapping showed that a polymorphism of Hvmyb10
perfectly cosegregated with the ant28 phenotype
on the distal region of the long arm of chromosome
3H. These results demonstrate that Ant28 encodes
Hvmyb10, the R2R3 MYB domain protein that regulates
proanthocyanidin accumulation in developing grains. The
reduced grain dormancy of ant28 mutants compared withthose of the respective wild types indicates that Hvmyb10
is a key factor in grain dormancy in barley.

野生植物グループ

Group of Wild Plant Science

本グループでは、野生植物の種子を、将来の応用的利用に役立つ遺伝資源として収集保存し、多様な野生種が持つ特性についての研究を行っている。今年度の研究成果の一部は以下の通りである。

Our group has been preserving wild plant seeds aspotential resources for practical use and has been
studying the features of various wild plant species. Our
main achievements during 2012 are described below.

１．イネ科デンプン粒の多様性に関する系統進化学的研
究
イネ科植物の種子に見られる細胞内の貯蔵デンプン粒
は、種ごと、あるいは属ごとに特有の形状を示すことが知られている。館岡（1962）は網羅的な観察によって、イネ科デンプン粒に複粒型、単粒型、単複混合型、二極性型の４つのタイプを認識した。光環境適応研究グルー
プとの共同で、これらの情報をイネ科全体の DNA 分子系統樹上でトレースしたところ、二極性以外の 3 つのタ
イプには属より大きな明瞭な系統的まとまりが見いだせなかったが、二極性とされている属は系統樹上でほぼ一つの系統群にまとまることが分かった。また、この系統群に含まれるイヌムギ属、オオムギ属、コムギ属について、当研究所が保存する冷凍種子を用いてデンプン粒の形状を観察したところ、オオムギ属とコムギ属では種間に形状の差が見られなかったが、イヌムギ属では著しい種間の差異が見られ、イヌムギ属には新規のデンプン粒型も見つかった。このことは、これまで不明であったデ
ンプン粒多型の進化的意義や進化メカニズムの研究が、（オオムギ属やコムギ属とも比較的近縁な）イヌムギ属
内の近縁種群を用いて可能になるかも知れないことを意味する。
２．自然林を利用した植物園の保全生物学的意義に関する研究
大阪府の生駒山系北部に位置する大学附属植物園で、野生高等植物の多様性調査を行い、採集した標本に基づいて目録を作成した。また、この調査の 50 年前に報告された同じ調査区域での野生植物目録と比較することによって変化を明らかにすると共に、国土地理院の航空写
真から、調査区域の環境の変化を追跡した。約 25ha の調査区に見られたシダ植物と種子植物は約 450 分類群であり、周辺地域と比べても豊富であることが分かった。
その一方、50 年前と比較すると湿地性の希少種の多くが消滅し、帰化植物の増加が著しく、林床性のシダ植物の増加が著しいことが分かった。航空写真や現地調査か
ら、調査区内にあった棚田が埋め立てられて人為的な明
るいシバ草地となり、過度の利用ではげ山化していた部分が森林へ遷移したことが分かり、植物相の変化を裏付けるものであった。新確認の在来野生種は約 200 種にのぼり、調査区内は原生的自然とはかけ離れているものの、植生管理が多様な環境を作り、それぞれ適応した種が棲み分けることで植物の多様性が生まれており、里山管理と似た効果があることが分かった。
（出版準備中）３．野生植物を利用した放射能汚染農地の回復に関する研究
東日本大震災により放射能汚染を受けた農地の除染に、耕地雑草を利用したいと考え、植物成長制御グルー
プおよび医学部と共同で様々な雑草種を採取して放射性物質の吸収率を測定し、吸収効率が高く生育の旺盛な雑草種を探索している。調査地は福島県飯舘村の耕地 4 ヶ所で、飯舘村役場と地主の方々の了解を得て、福島県農業総合研究センターと連絡をとりつつ研究を進めている。

1. A study on the diversity and evolution of starch grains
in Poaceae
Starch forms transparent grains, referred to as starchgrains (SGs), in amyloplasts. Despite the simple glucose
polymer composition of starch, SGs exhibit different
morphologies depending on plant species, especiallyin the endosperm of the family Poaceae. In previous
comprehensive work, SG morphologies of Poaceae
endosperm were classified into four types: compoundgrains, bimodal simple grains, uniform simple grains, anda mixed configuration comprised of compound and simple
grains. Despite these observations, the phylogenetic
relationships among the SG types remained unclear. In
this report, we analyzed the previous observations withrespect to current knowledge of the molecular phylogenyof Poaceae to determine how SG morphological types
are clustered and scattered in the phylogenetic tree. We
also obtained clear images of SGs of 26 species belonging
to the four genera Hordeum, Elymus, Triticum, andBromus. Previously published work indicated that the
SG morphology of these genera was clustered in thephylogenetic tree and was specific for the bimodal simple
grain type. However, we identified novel morphologicaltypes of SGs within Bromus in addition to the known
bimodal simple grain type. Further molecular phylogenetic
analysis and studies on the remarkable intragenericvariation found in this study will provide more informationon the SG morphological diversity.
2. Role of a botanical garden with secondary forests forpreserving biodiversity
At the Botanical Garden of Osaka City University
situated in northeast Osaka, an interdisciplinary research
project was conducted. We made a list of the wild vascularplants of the botanical garden (ca. 25ha) based on ourfield collections in the project. A comparison between
the list and the previous list reported on 1960 at same
area revealed some changes in the flora during the last 50
years: (1) most of the previously reported rare species
adapting to wetlands were not reconfirmed at present
survey, (2) many naturalized plant species newly invaded,and (3) many fern species adapting to forest floor were
newly found. These changes probably correlated with theartificial vegetation change and forest succession revealed
by our inspection and previous aerial photographs.
The present survey recorded ca.450 wild vascular plants
within the secondary vegetation of 25ha, and 200 native
species including many rare species were newly recorded
among them. The species diversity in this botanicalgarden was probably caused by constant maintenanceof vegetation making various environments similar tosatoyama.
3. A study on the phytoremediation of agricultural lands
polluted by radioactive isotopes using weeds
Collaborating with the Group of Plant Growth Regulation
and Faculty of Medicine, various weed species have beentested on absorbing activity of radioactive isotopes, mainly
134
Cs and 137Cs. The weed samples were collected fromagricultural lands in Iitate village (Fukushima Prefecture)
which was highly polluted with radioactive isotopes after
the nuclear power plant accident caused by the east Japan
earthquake disaster.

11

ゲノム育種ユニット（Applied Genomics Unit）

核機能分子解析グループ

Group of Nuclear Genomics

本研究グループでは、植物を主たる材料として、核および染色体の構造と機能に関する分子細胞学的および分子遺伝学的研究を行っている。現在は主として、植物の染色体機能要素（セントロメア、テロメア、複製起点）の構造解析を行っており、植物人工染色体の創出を目指している。今年度の研究成果の一部は以下の通りである。

Our research group has been conducting molecularstudies on the structures and functions of nuclei andchromosomes, mainly in plants. Our current goal is
to construct plant artificial chromosomes by analyzing
chromosome functional elements; centromeres, telomeres
and replication origins. Our main achievements in 2012
are described below.

１．シロイヌナズナ環状ミニ染色体の創出
真核生物の染色体は一般的に線状であるが、環状の染色体が出現することがある。このような環状染色体は、酵母から動植物に至るまで広く見つかっているが、多くは不安定で次代に伝達されない。しかし、我々は、シロ
イヌナズナの環状ミニ染色体が、安定に減数分裂を経て次代に伝達されることを発見した。この安定化機構を解析するために、今回我々は、Ac-Ds 及び Cre-LoxP シス
テムを組み合わせることにより新たな環状ミニ染色体を創出した。この環状ミニ染色体 ARC1 は、2.85 Mb のサ
イズしかなく、ほとんどの場合一動原体型として存続する。この ARC1 には、LoxP と呼ばれる 34 塩基対の特異的 DNA 配列を 1 カ所に含むことから、植物人工染色体としての利用が考えられる。

1. Generation of ring minichromosomes in Arabidopsis
thaliana
The chromosomes of eukaryotes are generally linear, but
ring-shaped chromosomes have occasionally appeared
in a wide range of organisms from yeasts to animals
and plants. Most of the ring chromosomes are unstable
and not transmissible to the next generation. However,
we found that in Arabidopsis ring chromosomes wererelatively stable. To elucidate the mechanisms underlying
the stability, we attempted to generate new artificial ring
chromosomes by the Ac-Ds and Cre-LoxP systems. The
generated ring minichromosome ARC1, was 2.85 Mb in
size, having monocentric structure. Since ARC1 contains a
LoxP site, consisting of a specific 34-bp sequence, it could
be used as an artificial chromosome vector in plants.

２．タバコ動原体特異的 DNA の解析
動原体は、細胞分裂時に染色分体を娘細胞へ均等に配分するために必須である。その機能は、酵母から動物、植物に至るまで保存的であるのに対して、動原体領域に存在し、その機能と関連する DNA は、ごく近縁な種の間でも異なることが知られている。タバコは、長鎖 DNAを形質転換できることから、人工染色体構築のためのモデル植物となる可能性を秘めている。しかし、人工染色体構築およびその解析に必須である動原体 DNA 配列および動原体タンパク質の解析は、これまで全く行われていなかった。そこで、我々は、人工染色体構築のために、タバコの動原体特異的タンパク質および DNA の解析を行っている。本年度は、HaloTag 融合 NtCENH3（タバコ動原体特異的ヒストン H3）を用いたクロマチンア
フィニティー精製により、新たに 3 種の染色体特異的動原体 DNA を単離した。これらの結果より、タバコ動原
体 DNA はモザイク構造をもつことが明らかになった。

2. Analysis of centromere-specific DNA sequences intobaccoCentromeres play an important role in segregating
chromatids into daughter cells at mitosis and meiosis.
Though the centromere function is conserved among
all eukaryotes including yeasts, animals and plants,
centromeric DNA sequences involved in the centromerefunction are diverged among closely related species. Sincelong DNA can be transformed into tobacco, tobacco hasa potential to be a model plant for artificial chromosomes
construction. However, centromeric DNA and proteins
which are necessary to construct and characterize artificial
chromosomes had not been investigated in tobacco.
Hence, we have been characterizing centromere specificproteins and DNA sequences. This year, we identified
three novel chromosome-specific centromeric DNA
sequences from tobacco using HaloTag fused NtCENH3,
centromere specific histone H3 variants in tobacco. The
discovery of three chromosome-specific centromeric
DNA sequences indicates the mosaic structure of tobacco
centromeres.

３．ネギ属動原体の解析
タマネギは、その染色体観察の容易さから世界各国で
細胞遺伝学実験の材料として用いられてきた。しかしながら、タマネギではセントロメアを識別できるマーカーが特定されていないことから、教科書中の植物細胞分裂に関する記述も動物のそれに比べて不十分であった。最近、我々の研究グループはネギ属植物 4 種（ネギ、タマネギ、ニラおよびニンニク）の CENH3（セントロメア
特異的ヒストン H3）をコードする cDNA を同定し、ネギ CENH3 の推定アミノ酸配列からペプチド抗体を作成した。この抗体と抗チューブリン抗体を用いたタマネギの根切片に対する組織免疫染色を行い、共焦点レーザー
顕微鏡により Z 軸切片画像を得た。これらの画像をもとに 3 次元画像を構築したところ、タマネギの細胞分裂の各時期の細胞の立体構造を明確に可視化することができた。また、この抗体を利用したクロマチン免疫沈降により、ネギのセントロメア DNA を世界で初めて単離する
ことに成功した。

3. Analysis of kinetochores in Allium species
Allium species including onion have been used asmaterials of cytogenetic experiments in the world becauseof the ease of the chromosome observation. However,since markers which can specify kinetochores have notbeen identified yet in Allium species, cell divisions inplants are not described in details compared with these inanimals. Recently, we identified cDNAs encoding CENH3(centromere-specific histone H3) in four Allium species(welsh onion, onion, garlic chive and garlic), and produced
a peptide antibody from a deduced amino-acid sequenceof CENH3. Using this antibody and anti-tubulin antibody,
we conducted an immunohistochemical analysis of onion
root slices, and obtained Z-axis section pictures using a
confocal-laser scanning microscope. Three-dimensional(3D) images built from these pictures could visualize
clearly the 3D structure of onion dividing cells in eachphase of the cell-cycle. Utilizing the antibody, in addition,
we succeeded in isolating the centromeric-DNA sequencesfrom welsh onion by chromatin immunoprecipitation.

12ゲノム制御グループ

Group of Genome Regulation

本グループでは、トランスポゾンタギング系統の利用や野生種の遺伝子による効率的な食料生産のために必要な遺伝要因の解明および種子成熟に係わる遺伝子発現制
御機構の解明を目的とする。

Our group has been studying the genetic factors
necessary for increasing food production by usingtransposon-tagging lines and genes from wild species,
and also on the genetic regulatory mechanism of seedmaturation.

１．コシヒカリ nDart1 タグラインの育成
イネ遺伝子の効率的機能解析と利用のために、内在性
トランスポゾン nDart1 を導入したコシヒカリのタグラ
インを育成した。本年度は、穂別 3,061 系統を栽培し、幼苗期、移植後、出穂期および成熟期において形質調査を行った。その結果、1,373 系統で何らかの変異が認められ、その頻度は 44.9％であった。コシヒカリ nDart1
タグラインを耐塩性選抜にも用い、1 次スクリーニング
で約 70 個体を選抜した。

1. Development of nDart1-0-tagged lines with the genetic
background of Koshihikari
In order to efficiently analyze the function of rice genes,
we developed nDart1-tagged lines of Koshihikari. This
year, 3,061 panicle-row lines were grown and several
phenotypes were surveyed at seedling, post-transplanting,heading and matured stages. Out of 3,061 lines, 1,373
lines showed mutant phenotypes and the frequency ofmutant lines was 44.9%. These tagged lines were used forselection of salt-tolerant lines and ca.70 tolerant plants
were selected by primary screening.

２．低投入適応型（LIA）イネの開発
21 世紀の農業では環境との調和を計ることが重要である。アフリカの野生イネ、Oryza longistaminata と日本型 T-65 との交雑後代で、無施肥水田で大きなバイ
オマスを示す系統を選抜してきた。この選抜系統と農林
18 号を交雑した F2 での生育旺盛性に係わる形質の QTL
解析を行った結果、選抜系統が有する第 3、5、6、8、9、10 および 11 染色体に重要な QTL を検出した。
３．種子休眠制御 QTL である DOG1 のコムギオーソロ
グの解析
DOG1 は種子休眠性を制御する QTL としてシロイヌ
ナズナにおいて同定された遺伝子である。シロイヌナズ
ナでは種子成熟の制御因子である LEC2 が DOG1 の発現を制御することが明らかとなっている。TaDOG1 はコムギにおけるオーソログで、この遺伝子の発現量はコ
ムギ品種における種子休眠性の変異と有意な相関を示した。一方で、LEC2 のコムギオーソログである TaLTL1の発現は品種変異との相関が低かった。コムギにおける
TaDOG1 の発現制御には、TaLTL1 だけでなく他の要因も関わる可能性がある。
４．種子で発現するオオムギ TIP による水輸送活性の調節
種子の発達と乾燥に関わる細胞内水環境を調べるた
め、 オ オ ム ギ か ら 液 胞 膜 型 ア ク ア ポ リ ン（tonoplast
intrinsic protein, TIP）を単離し、解析を行った。種子で発現する TIP のうち、HvTIP1;2、HvTIP2;1 は水輸送活性を示すが、HvTIP3;1 は水輸送活性を示さなかった。しかしながら、HvTIP3;1 は他のアクアポリン分子種との相互作用し、水輸送活性の調節を行っている可能性が示唆された。
５．イネ科野生植物の金属及び酸化ストレス耐性機構に関する解析
メリケンカルカヤの高い Al ストレス耐性機構について新たに解析した結果、1) クエン酸等の有機酸の生成と分泌による根での Al 吸収抑制や無毒化、2)Al 処理による NO の生成誘導とそれをシグナル伝達物質とした抗酸化酵素やポリフェノール類の発現が明らかになった。またこの植物由来の ABC transporter 遺伝子と S-adenosyl
methionine syntase (SAMS) 遺伝子をシロイヌナズナに導入した形質転換体は、
Al, Cu, Zn diamide に耐性を示し、多種耐性機構へのこれらの遺伝子の関与が示唆された。

2. Breeding of Low Input-Adaptable (LIA) rice
In the 21th century, agriculture should be in harmony
with the environment. We selected the progeny showing
large biomass under non-fertilized paddy field from thecross between Oryza longistaminata, African wild
species, and T-65, japonica rice. In order to reveal thegenetic factors for large biomass production under nonfertilized conditions, quantitative trait locus (QTL)
analysis of a large biomass character in the F2 ofthe cross between the selected plant and No.18 was
conducted, revealing that important QTLs were located on
chromosomes 3,5,6,8,9,10 and 11.
3. Analysis of the wheat ortholog of DOG1 identified as a
QTL for controlling seed dormancy
DOG1 has been identified as a QTL for controlling
seed dormancy in Arabidopsis. Master regulator of seedmaturation, LEC2, regulates the expression of DOG1.
TaDOG1 is a wheat ortholog and the expression levels
showed a significant correlation with the seed dormancy
in cultivars showing different levels of seed dormancy.
TaLTL1 is a wheat ortholog of LEC2. The expressionof TaLTL1 had lower correlation with seed dormancy.
Regulation of TaDOG1 requires TaLTL1 and/or otherfactors in wheat.
4. Control of the water transport activity of barleytonoplast intrinsic proteins (TIPs) expressed in seeds
To investigate the cellular water condition during theperiods of seed development and seed desiccation,
we isolated and analyzed Tonoplast type Aquaporins(tonoplast intrinsic proteins, TIPs) from barley. HvTIP1;2
and HvTIP2;1 expressed in seeds showed the watertransport activity, while HvTIP3;1 alone did not. However,HvTIP3;1 showed interaction with other aquaporins, and it
seems to control the water transport activity.
5. Tolerance mechanism against metal stresses andoxidative stress in poaseae wild plants
Andropogon virginicus L. is a wild plant which showsa high tolerance to Al stress. Synthesis and secretion of
succinate and malate in root were induced by Al stressto suppress Al-uptake. Nitrogen monoxide (NO) was
also induced by Al stress. NO may be a trigger of theinduction of anti-peroxidation enzymes and poly-phenols.
Furthermore, ABC transporter gene and S-adenosyl
methionine syntase gene derived from Andropogon could
confer multiple-tolerance to Al, Cu, Zn and diamide
in Arabidopsis, suggesting a contribution to multiple
tolerance.

13

次世代作物共同研究コア（Research Core for Future Crops）

萌芽的・学際的新展開グループ

Grouo of Innovative Research

赤潮は、日照・水温・栄養塩濃度などの条件が重なると爆発的に増殖する植物プランクトン数種からなるが、
本グループは、このうちの大部分を占めているヘテロシ
グマの生物学的特性を解明することで、その増殖能・光合成能の制御機構を探ることを志している。また、並行して、ヘテロシグマ・アカシオウイルスの宿主内での増殖の分子生物学的解析を並行して行っている。

Harmful algal bloom, or red tide, is consisted ofseveral algal species that propagates dramaticallyunder combination of certain conditions, such as watertemperature, light intensity, and concentration ofnutritional salts. We aim to elucidate the mechanism of
fast propagation and photosynthesis of Heterosigma,that consists large part of the harmful algal bloom. We
currently focus on sequencing Heterosigma akashiwo
genome using next generation sequencing technology.
At the same time, we are investigating the propagation
mechanism of Heterosgma akashiwo virus.

１．赤潮原因藻ヘテロシグマのゲノム配列解析
ヘテロシグマの有機物生産力の特性を分子レベルで理解することを目指して、ヘテロシグマのゲノム配列を次世代シークエンス法で解読中である。クローン化したヘテロシグマを入手し、DNA を精製後、次世代シークエ
ンス法を用いて、ゲノム配列を解析し、その配列を生物
情報学的に解析している。

1. Sequencing Heterosigma akashiwo genome using next
generation sequencing technology
Full genome sequencing of Heterosigma akashiwo
is currently underway. Heterosigma akashiwo wascloned, its total DNA was obtained and its sequence
was read using next generation sequencing technology.
The obtained sequence information is to be analyzed bybioinformatics approaches.

２．ヘテロシグマ・アカシオウイルスの宿主内での増殖の分子生物学的解析
ヘテロシグマに感染して殺藻するウイルスの一つとして、ヘテロシグマ・アカシオウイルス（HaV）があげられる。このウイルスは、二本鎖 DNA ウイルスで、DNA
ポリメラーゼ B に属するポリメラーゼを持つが、この活性中心に相当する部分に、アミノ酸 220 残基ほどのインテイン配列が挿入されている。インテイン配列は、タン
パク質の自己スプライシングを起こす配列として知られており、組換えタンパク質の作成などの応用目的に広く使用されているものの、その生物学的存在意義は未だ不明である。我々は、インテイン切り出しが、その配列を有する機能性タンパク質の活性調節を担っている可能性について分子生物学的研究を行っている。

2. Analysis of propagation mechanism of Heterosigma
akashiwo virus
Heterosigma akashiwo virus, (HaV) is one of theviruses that infect and kills Heterosigma akashiwo.
It is a double stranded DNA virus, and possesses DNA
polymerase B-type enzyme. Interestingly, the enzyme
possesses approximately 220 amino acid-long `intein`domain in the center of its catalytic domain. Intein is amotif that catalyzes self-splicing of the protein, thus has
been widely utilized to express and purify recombinant
proteins, but its biological significance is not clearly
understood. We aim to demonstrate that the self-splicing
of intein actually functions as a `biological switch` to turnon the enzymatic activity of the host protein, HaV DNA
polymerase B.

国際的新展開グループ

Group of International Collaboration

本グループでは植物研と農学部の教員が兼任となり、植物研の拠点研究領域である「植物遺伝資源・ストレス科学研究」を国際的に展開するためのネットワーク作り、国際交流を行う。平成 22~24 年度は、日本学術振興会のアジア・アフリカ学術基盤形成事業により「東アフリカ
における作物ストレス科学研究ネットワーク拠点形成と次世代作物の開発」が採択されており、この事業によりケニアおよび東アフリカ諸国との国際交流・共同研究を行った。

This group consists of concurrent faculty members fromother groups, and aims in establishing an international hub
and/or exchange programs on Plant Genetic Resources
and Stress Science. The current running program is
Establishment of crop stress science network forincrease of food production in eastern Africa , which is
being conducted by Asia-Africa Science Platform Program(AASPP) from Japan Society for the Promotion of Science(JSPS).

１．ケニア人研究者の受入れと共同研究
今年度は、ジョモケニアッタ農工大学から大学院生３
名を光環境適応研究グループ、植物成長制御グループ、
植物・微生物相互作用グループに、ケニア農業研究所から１名をゲノム多様性グループに受入れ、２ヶ月間、研究の指導や共同研究を行った。
２．学術集会の開催「IPSR ケニアデー 2012」を植物研にて開催し、口頭とポスターによる研究発表会、親睦会を行った。さらに、
ジョモケニアッタ農工大学（ナイロビ）で開催された
7th JKUAT CONFERENCE を共催し、サブテーマの１つとしてシンポジウム「Innovative Crop Stress Science for
Sustainable Food Production」を開催した。本会議には約 300 名の参加者があり、岡山大学から５名の教員と１名の博士前期大学院生がシンポジウムに参加し、基調講演と成果発表を行った。本会議にはルワンダとタンザニ
アの研究者も招へいし今後の交流を検討した。

14

1. Visiting program and international collaboration
We invited three researchers from Jomo Kenyatta
University of Agriculture and Technology (JKUAT) to
Plant Light Acclimation Research Group, Plant Growth
Regulation Group, and Plant-Microbe Interaction Group,and one researcher from Kenya Agricultural ResearchInstitute to Genome Diversity Group. During their stay at
IPSR for two months, they learned advanced experimental
skills in their disciplines and performed collaborative
projects.
2. Meetings
To encourage an exchange between young researchers,
we organized IPSR Kenya Day 2012 in October at
IPSR, with fifteen oral and poster presentations. We
also co-hosted 7th JKUAT Scientific, Technological andIndustrialisation Conference held in JKUAT campus inNovember, where we organized one symposium under
our sub-theme Innovative Crop Stress Science for
Sustainable Food Production . This conference had
approximately 300 participants. Five faculty members andone graduate student from Okayama University attended
the conference and presented plenary and research talks.
At this conference, we invited two researchers from
Rwanda and Tanzania under the support from AASPP, topromote future collaboration in other African countries.

出版物リスト（List of Publication）
大気環境ストレスユニット（Atmospheric Stress Unit）

光環境適応研究グループ（Group of Plant Light Acclimation Research）⑴

Kato, Y., Kouso, T. and Sakamoto, W. 2012. Variegated tobacco leaves generated by chloroplast FtsH suppression:
implication of FtsH function in the maintenance of thylakoid membranes. Plant Cell Physiol. 53: 391-404.
⑵ Tang L. Y., Matsushima R. and Sakamoto W. 2012. Mutations defective in ribonucleotide reductase activity interferewith pollen plastid DNA degradation mediated by DPD1 exonuclease. Plant J. 70: 637-649.
⑶ 松島 良 . 2012. 澱粉粒の簡便観察法の開発とその利用 . 応用糖質科学 2: 147-149. (Matsushima, R. 2012. Applicationsof a rapid method to observe starch grains. Bulletin of Applied Glycoscience 2: 147-149).
⑷ Kato, Y., Sun, X., Zhang, L. and Sakamoto, W. 2012. Cooperative D1 Degradation in the Photosystem II Repair Mediatedby Chloroplastic Proteases in Arabidopsis. Plant Physiol. 159: 1428-1439.
⑸ Zhang, L., Kato, Y., Otters, S., Vothknecht, UC. and Sakamoto, W. 2012 Essential Role of VIPP1 in Chloroplast Envelope
Maintenance in Arabidopsis. Plant Cell 24: 3695-3707.
⑹ Nakano, R.T., Matsushima, R., Nagano, A. J., Fukao Y., Fujiwara, M., Kondo, M., Nishimura, M. and Hara-Nishimura,I. 2012. ERMO3/MVP1/GOLD36 is involved in a cell type-specific mechanism for maintaining ER morphology inArabidopsis thaliana. PLoS ONE e49103.
⑺ Matsushima, R., Yamashita, J., Kariyama, S., Enomoto, T. and Sakamoto, W. A phylogenetic re-evaluation ofmorphological variations of starch grains among Poaceae species. J. Appl. Glycosci. (in press)

細胞分子生化学グループ（Group of Cytomolecular Biochemistry）⑴

Sugimoto, M., Gusev, O.A., Rabbow, E., Sychev, V.N., Levinskikh, M.A., Novikova, N.D. and Grigoriev, A.I. Effect of UV
radiation on viability of plant seeds under atmosphere of outer space and mars. Doklady Biological Science (inpress)

環境応答機構研究グループ（Group of Environmental Response Systems）
⑴

⑵

⑶
⑷

⑸
⑹
⑺

⑻

Murayama, M., Hayashi, S., Nishimura, N., Ishide, M., Kobayashi, K., Yagi, Y., Asami, T., Nakamura, T., Shinozaki, K.
and Hirayama, T. 2012. Isolation of Arabidopsis ahg11 a weal ABA hypersensitive mutant defective in nad4 RNA
editing. J. Exp. Bot. 63: 5301-5310.
Okamoto, M., Tsuboi, Y., Goda, H., Yoshizumi, T., Shimada, Y. and Hirayama, T. 2012. Multiple hormone treatment
revealed novel cooperative relationships between abscisic acid and biotic stress hormones in cultured cells. Plant
Biotech. 29: 19-34.
Salam, M. A., Jammes, F., Hossain, M. A., Ye, W. X., Nakamura, Y., Mori, I. C., Kwak, J.M. and Murata, Y. 2012. MAP
kinases, MPK9 and MPK12, regulate chitosan-induced stomatal closure. Biosci. Biotech. Biochem. 76: 1782-1787.
Sobahan, M. A., Akter, N., Ohno, M., Okuma, E., Hirai, Y., Mori, I. C., Nakamura, Y. and Murata, Y. 2012. Effects ofexogenous proline and glycinebetaine on the salt tolerance of rice cultivars. Biosci. Biotech. Biochem. 76: 15681570.
Hoque, M. A., Uraji, M., Torii, A., Banu, M. N. A., Mori, I. C., Nakamura, Y. and Murata, Y. 2012. Methylglyoxal inhibitionof cytosolic ascorbate peroxidase from Nicotiana tabacum. J. Biochem. Mol. Tox. 26: 315-321.
Jannat, R., Uraji, M., Hossain, M. A., Islam, M. M., Nakamura, Y., Mori, I. C. and Murata, Y. 2012. Catalases negatively
regulate methyl jasrnonate signaling in guard cells. J. Plant Physiol. 169: 1012-1016.
Ohno, M., Uraji, M., Shimoishi, Y., Mori, I. C., Nakamura, Y. and Murata, Y. 2012. Mechanisms of the selenium toleranceof the Arabidopsis thaliana knockout mutant of sulfate transporter SULTR1;2. Biosci. Biotech. Biochem. 76:
993-998.
Uraji, M., Katagiri, T., Okuma, E., Ye, W. X., Hossain, M. A., Masuda, C., Miura, A., Nakamura, Y., Mori, I. C., Shinozaki,
K. and Murata, Y. 2012. Cooperative function of PLDδ and PLDα 1 in abscisic acid-induced stomatal closure in
Arabidopsis. Plant Physiol. 159: 450-460.

17

⑼Sugiyama, Y., Uraji, M., Watanabe-Sugimoto, M., Okuma, E., Munemasa, S., Shimoishi, Y., Nakamura, Y., Mori, I. C., Iwai,
S. and Murata, Y. 2012. FIA functions as an early signal component of abscisic acid signal cascade in Vicia faba
guard cells. J. Exp. Bot. 63: 1357-1365.

土壌環境ストレスユニット（Soil Stress Unit）

植物ストレス学グループ（Group of Plant Stress Physiology）
⑴
⑵
⑶
⑷
⑸

⑹
⑺
⑻
⑼

⑽
⑾
⑿

⒀

⒁

⒂
⒃

Zheng, L. Q., Yamaji, N., Yokosho, K. and Ma, J. F. 2012. YSL16 is a phloem-localized transporter of the coppernicotianamine complex that is responsible for copper distribution in rice. Plant Cell 24: 3767-3782.
Suzuki, S., Ma, J. F., Yamamoto, N., Hattori, T., Sakamoto, M. and Umezawa, T. 2012. Silicon deficiency promotes lignin
accumulation in rice. Plant Biotechnol. 29: 391-394.
Ma, J. F. 2012. Silicon Transporters. V.N. Uversky, R.H. Kretsinger, E.A. Permyakov (eds.), Encyclopedia ofMetalloproteins, DOI 10.1007/978-1-4614-1533-6, Springer.
Yamaji, N., Chiba, Y., Mitani-Ueno, N. and Ma, J. F. 2012. Functional characterization of a silicon transporter gene
implicated in silicon distribution in barley. Plant Physiol. 160: 1491-1497.
Tsutsui, T., Yamaji, N., Huang, C. H., Motoyama, R., Nagamura, Y. and Ma, J. F. 2012. Comparative genome-wide
transcriptional analysis of Al-responsive genes reveals novel Al tolerance mechanisms in rice. PLoS ONE 7(10):e48197. doi:10.1371/journal.pone.0048197.
Chen, Z. C. and Ma, J. F. 2012. Magnesium transporters and its role in Al tolerance in higher plants. Plant Soil DOI
10.1007/s11104-012-1433-y.
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植物成長制御グループ（Group of Plant Growth Regulation）⑴

Hoque, T.S., Okuma, E., Uraji, M., Furuichi, T., Sasaki, T., Hoque, M.A., Nakamura, Y. and Murata, Y. 2012. Inhibitory
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⑵Wu, D., Zhao, M., Shen, S., Fu, Y., Sasaki, T., Yamamoto, Y., Wei, W. and Shen, H. 2012. Al-induced secretion of organicacid, gene expression and root elongation in soybean roots. Acta Physiol. Plant. (in press) DOI 10.1007/s11738012-1067-y⑶ Chan, T., Shimizu, Y., Pospíšil, P., Nijo, N., Fujiwara, A., Taninaka, Y., Ishikawa, T., Hori, H., Nanba, D., Imai, A., Morita, N.,
Yoshioka-Nishimura, M., Izumi, Y., Yamamoto, Y., Kobayashi, H., Mizusawa, N., Wada, H. and Yamamoto, Y. 2012.
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⑷ Yamamoto, Y., Demiral, T., Sasaki, T., Sano, T., Hasezawa, S. and Izumi, Y. 2012. Mechanisms of aluminum-induced cell
death in plant cells. In: Proceedings of 8 th International Symposium on Plant-Soil Interactions at Low pH, pp 102103.

分子生理機能解析グループ（Group of Molecular and Functional Plant Biology）⑴

Shibasaka, M., Sasano, S., Utsugi, S. and Katsuhara, M. 2012. Functional characterization of an novel plasma membrane
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⑵ Kuwagata, T., Ishikawa-Sakurai, J., Hayashi, H., Nagasuga, K., Fukushi, K., Ahamed, A., Takasugi, K., Katsuhara, M.
and Murai-Hatano, M. 2012. Influence of low air humidity and low root temperature on water uptake, growth andaquaporin expression in rice plants. Plant Cell Physiol. 53: 1418-1431.
⑶ Horie, T., Karahara, I. and Katsuhara, M. 2012. Salinity tolerance mechanisms in Glycophytes: An overview with thecentral focus on rice plants. Rice 5: 11.
⑷ Hooijmaijers, C., Rhee, J.Y., Kwak, K.J., Chung, G.C., Horie, T., Katsuhara, M. and Kang, H. 2012. Hydrogen peroxide
permeability of plasma membrane aquaporins of Arabidopsis thaliana. J. Plant Res. 125: 147-153.

環境生物ストレスユニット（Biotic Stress Unit）

植物・微生物相互作用グループ（Group of Plant-Microbe Interactions）
⑴
⑵
⑶

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spicatum. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 62: 2602-2607.
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⑾Saimmai, A., Tani, A., Sobhon, V. and Maneerat, S. 2012. Mangrove sediment, a new source of potential biosurfactantproducing bacteria. Annals Microbiol. 62: 1669-1679.
⑿ Tani, A., Sahin, N., Matsuyama, Y., Enomoto, T., Nishimura, N., Yokota, A. and Kimbara, K. 2012. High-throughput
identification and screening of novel Methylobacterium species using whole-cell MALDI-TOF/MS analysis. PLoS
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⒀ Ngamau, C.N., Matiru, V.N., Tani, A. and Wangari, M.C. 2012. Isolation and identification of endophytic bacteria of
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⒁ Nakagawa, T., Mitsui, R., Tani, A., Sasa, K., Tashiro, S., Imawa, T., Hayakawa, T., Kawai, K. 2012. A catalytic role ofXoxF1 as La3+-dependent methanol dehydrogenase in Methylobacterium extorquens strain AM1. PLoS ONE, 7:
e50480.
⒂ Kawai, F. and Tani, A. 2012. Genes involved in novel adaptive aluminum resistance in Rhodotorula glutinis.
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Science and Business Media. Springer-Verlag Berlin Heidelberg,-1. DOI:10.1007/SpringerReference_327448

植物・昆虫間相互作用グループ（Group of Plant-Insect Interactions）
⑴

⑵

⑶
⑷

⑸
⑹

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⑼
⑽
⑾
⑿

⒀

Bao, W.X. and Sonoda, S. 2012. Resistance to cypermethrin in melon thrips, Thrips palmi Karny (Thysanoptera:
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phenolamide levels by activating three novel hydroxycinnamoyl-CoA: polyamine transferases in Nicotiana
attenuata. Plant Physiol. 158: 389-407.
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Environ. (in press)

20

遺伝資源ユニット（Genetic Resources Unit）

ゲノム多様性グループ（Group of Genome Diversity）
⑴

⑵
⑶

⑷
⑸
⑹

⑺

⑻
⑼

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Iimure, T. and Sato, K. Beer proteomics analysis for beer quality control and malting barley breeding. Food Res. Int. (inpress)

遺伝資源機能解析グループ（Group of Genetic Resources and Functions）⑴⑵⑶

Taketa, S., Yuo, T., Tonooka, T., Tsumuraya, Y., Inagaki, Y., Haruyama, N., Larroque, O. and Jobling, S.A. 2012.
Functional characterization of barley betaglucanless mutants demonstrates a unique role for CslF6 in (1,3;1,4)- β-D-glucan biosynthesis. J. Exp. Bot. 63(1): 381-392.
Yuo, T., Yamashita, Y., Kanamori, H., Matsumoto, T., Lundqvist, U., Sato, K., Ichii, M., Jobling, S.A. and Taketa, S. 2012.
A SHORT INTERNODES (SHI) family transcription factor gene regulates awn elongation and pistil morphology inbarley. J. Exp. Bot. 63(14): 5223-5232.
Himi, E., Yamashita, Y., Haruyama, N., Yanagisawa, T., Maekawa, M. and Taketa, S. 2012. Ant28 gene forproanthocyanidin synthesis encoding the R2R3 MYB domain protein (Hvmyb10) highly affects grain dormancy inbarley. Euphytica 188: 141-151.

野生植物グループ（Group of Wild Plant Science）⑴⑵

Matsushima, R., Yamashita, J., Kariyama, S., Enomoto, T. and Sakamoto, W. A phylogenetic re-evaluation ofmorphological variations of starch grains among Poaceae species. Journal of Applied Glycoscience 60(1) (inpress)
Sonoda, S., Yamashita, J., Koshiyama, Y., Kohara, Y. and Enomoto, T. Short-term effects of mowing on insect
communities in Japanese peach orchards. Applied Entomology and Zoology (in press)

21

ゲノム育種ユニット（Applied Genomics Unit）

核機能分子解析グループ（Group of Nuclear Genomics）⑴

Nagaki, K., Shibata, F., Kanatani, A., Kashihara, K. and Murata, M. 2012. Isolation of centromeric-tandem repetitive
DNA sequences by chromatin affinity purification using a HaloTag7-fused centromere-specific histone H3 in
tobacco. Plant Cell Reports 31: 771-779.
⑵ Nagaki, K., Yamamoto, M., Yamaji, N., Mukai, Y. and Murata, M. 2012. Chromosome dynamics visualized with an anticentromeric histone H3 antibody in Allium. PLOS ONE 7(12): e51315.
⑶ Banaei-Moghaddam, A. M., Schubert, V., Kumke, K., Klemme, S., Weiß, O., Nagaki, K., Macas, J., González-Sánchez, M.,
Heredia, V., Gómez-Revilla, D., González-García, M., Vega, J., Puertas, M. and Houben, A. 2012. Nondisjuction infavour of a chromosome - the mechanism of rye B chromosome accumulation at pollen mitosis. The Plant Cell (inpress).
⑷ Murata, M. Arabidopsis centromeres. In: Plant Centromere Biology (Ed. Jiang, J., Birchler, J. A.), Wiley-Blackwell, New
York, (in press)

ゲノム制御グループ（Group of Genome Regulation）
⑴

⑵
⑶
⑷
⑸

Himi, E., Yamashita, Y., Haruyama, N., Yanagisawa, T., Maekawa, M. and Taketa, S. 2012. Ant28 gene forproanthocyanidin synthesis encoding the R2R3 MYB domain protein (Hvmyb10) highly affects grain dormancy inbarley. Euphytica 188: 141-151.
Eun, C.H., Takagi, K., Park, K.I., Maekawa, M., Iida, S. and Tsugane, K. 2012. Activation and epigenetic regulation of
DNA transposon nDart1 in rice. Plant Cell Physiol. 53(5): 857-868.
Ezaki, B. and Nakakihara, E. 2012. Possible involvement of GDI1 protein, a GDP dissociation inhibitor related to vesicletransport, in an amelioration of zinc toxicity in Saccharomyces cerevisiae. Yeast 29: 17-24.
Kouno, T. and Ezaki B. Multiple regulation of Arabidopsis AtGST11 gene expression by four transcription factors underabiotic stresses. Physiologia Plantarum (in press).
Shibasaka, M., Sasano, S., Utsugi, S. and Katsuhara, M. 2012. Functional Characterization of a Novel Plasma Membrane
Intrinsic Protein2 in Barley. Plant signaling & behavior（in press）

22

国際会議およびシンポジウム（List of International Conferences and Symposia）
大気環境ストレスユニット（Atmospheric Stress Unit）

光環境適応研究グループ（Group of Plant Light Acclimation Research）⑴

Sakamoto, W. Tissue-specific organelle DNA degradation mediated by DPD1 exonuclease. Plant and Animal Genome
XX. San Diego, U.S.A., January 14-18, 2012.
⑵ Tang, L.Y. and Sakamoto, W. Ribonucleotide reductase activity controls plastid DNA degradation during pollen
development. Plant and Animal Genome XX. San Diego, U.S.A., January 14-18, 2012.
⑶ Sakamoto, W. Prokaryotic factors in the biogenesis and continuity of chloroplasts: Focus on DNA, protein, andmembrane. Society for Experimental Biology Annual Main Meeting. Salzburg, Austria, June 29-July 2, 2012.
⑷ Sakamoto, W. Prokaryotic factors in the biogenesis and continuity of chloroplasts: Focus on DNA, protein, andmembrane. Special Seminar, Department of Biology. Ludwig-Maximillians-Universitat Munchen, Munich, Germany,
July 3, 2012.
⑸ Kato, Y., Sun, X., Zhang, L. and Sakamoto, W. Cooperative D1 degradation in the photosystem II repair mediated bychloroplastic proteases in Arabidopsis. Okayama University International Symposium Structure and Dynamics of
Photosynthetic Systems . Okayama, Japan, October 22-23, 2012.
⑹ Kato, Y. and Sakamoto, W. Analysis of D1 degradation in the mutants lacking phosphorylation of PSII core protein.
Okayama University International Symposium Structure and Dynamics of Photosynthetic Systems . Okayama,
Japan, October 22-23, 2012.
⑺ Sakamoto, W. Innovative crop stress science for sustainable food production. The seventh JKUAT scientific,
technological and industrialization conference. Nairobi, Kenya, November 15-16, 2012.

細胞分子生化学グループ（Group of Cytomolecular Biochemistry）⑴

Sugimoto, M., Kanamori, T., Gusev, O., Levinskikh, M., Sychev, V., Podolsky, I., Bingham, G., Wheeler, R. and
Hummerick, M. Gene expression profile of Mizuna (Brassica rapa) grown under a space environment. 39th
Scientific Assembly of the Committee on Space Research. Mysore, India, July 14-22, 2012. P. 257.
⑵ Kihara, M., Hoki, T., Yamada, S., Gusev, O., Levinskikh, M., Sychev, V. and Sugimoto, M. Field performance and grain
content of Space Barley , grain of malting barley stored outside international space station for thirteen months.
39th Scientific Assembly of the Committee on Space Research. Mysore, India, July 14-22, 2012. P. 99.
⑶ Gusev, O., Sychev, V., Novikova, N., Sugimoto, M., Okuda, T. and Kikawada, T. Survival in extreme environment bypreserve-expand-specialize strategy: lessons from comparative genomics of an anhydrobiotic midge. 39th
Scientific Assembly of the Committee on Space Research. Mysore, India, July 14-22, 2012. P. 256.
⑷ Katayama, N., Sugimoto, M., Yamashita, M, Hashimoto, H., Space Agriculture Task Force, Kihara, M. Role of the barleyin space foods. 39th Scientific Assembly of the Committee on Space Research. Mysore, India, July 14-22, 2012. P.
103.
⑸ Gusev, O., Kukae, K., Sugimoto, M., Kikawada, T., Sakashita, T. and Okuda, T. Surviving rules: wide overlap in gene
expression response to desiccation and ionizing radiation in an anhydrobiotic midge. 12th European Workshop on
Astrobiology. Stockholm, Sweden, October 15-17, 2012. P. 198.
⑹ Sugimoto, M., Katayama, N., Kihara, M., Gusev, O., Levinskikh, M. and Sychev, V. Utilization of barley for space foods.
Bioactive Okayama 2012, Okayama, September 13-14, 2012. P. 80.

環境応答機構研究グループ（Group of Environmental Response Systems）⑴

Uraji, M., Katagiri, T., Okuma, E., Ye, W. X., Hossain, M. A., Masuda, C., Miura, A., Nakamura, Y., Mori, I. C., Shinozaki, K.
and Murata, Y. Cooperative function of PLDδ and PLDα1 in abscisic acid-induced stomatal closure in Arabidopsis.
4th Pan American Plant Membrane Biology Workshop. Asilomar, California, USA, May 16-20, 2012.
⑵ Hirayama, T., Matsuura, T., Ushiyama, S. and Hayashi, S. AHG2/PARN and AHG2 suppressor 1 (AGS1) regulate thepolyA status of mitochondrial mRNA. 23rd International Conference of Arabidopsis Research. Vienna Austria, July
3-7, 2012.

23

⑶

⑷

Sugiyama, M., Otsuka, K., Konishi, M., Kinoshita, A., Hachiya, T., Noguchi, K., Ueda, T. and Hirayama, T. Roleof mitochondria in the restriction of formattive cell division at the initial stage of lateral root primordium
development. 23rd International Conference of Arabidopsis Research. Vienna, Austria, July 3-7, 2012.
Hirayama, T. Plant specific function of polyA specific ribonuclease (PARN). Frontiers in Plant RNA Research 2012.
Sapporo, Japan, Oct. 16-17, 2012.

土壌環境ストレスユニット（Soil Stress Unit）

植物ストレス学グループ（Group of Plant Stress Physiology）
⑴
⑵

⑶
⑷
⑸

⑹
⑺
⑻

⑼

⑽
⑾
⑿

Ma, J. F. Involvement of a magnesium transporter in aluminum tolerance in rice. International Symposium on
Magnesium in Crop Production, Food Quality and Human Health. Goettingen, Germany, May 8-9, 2012.
Chen, Z. C., Yamaji, N. and Ma, J. F. Knockout of a Mg transporter gene resulted in increased Al sensitivity in rice.
International Symposium on Magnesium in Crop Production, Food Quality and Human Health. Goettingen,Germany, May 8-9, 2012.
Ma, J. F. Silicon transporters for uptake, translocation and distribution in higher plants. Gordon Research Conferences
2012, Biomineralization. New London, USA, August 12-17, 2012.
Ma, J. F., Yamaji, N., Yokosho, K., Xia, J. X., Fujii, M. and Chen, Z. Molecular mechanisms of Al tolerance in gramineous
crops. The 8th International Symposium on Plant-Soil Interactions at Low pH. Bengaluru, India, Oct. 18-22, 2012.
Yamaji, N., Sasaki, A., Yokosho, K., Xia, J. X. and Ma, J. F. OsNramp3-mediated distribution of Mn is controlled byexternal Mn supply in rice. The 8th International Symposium on Plant-Soil Interactions at Low pH. Bengaluru,
India, Oct. 18-22, 2012.
Yokosho, K., Yamaji, N. and Ma, J. F. Isolation and characterization of an Al-induced transporter gene in buckwheat. The
8th International Symposium on Plant-Soil Interactions at Low pH. Bengaluru, India, Oct. 18-22, 2012.
Xia, J. X., Yamaji, N., Mitani, N. and Ma, J. F. A gene encoding a cysteine-rich peptide is involved in rice Al tolerance.
The 8th International Symposium on Plant-Soil Interactions at Low pH. Bengaluru, India, Oct. 18-22, 2012.
Chen, Z. C., Yamaji, N. and Ma, J. F. Up-regulation of a magnesium transporter gene OsMGT1 is required for aluminum
tolerance in rice. The 8th International Symposium on Plant-Soil Interactions at Low pH. Bengaluru, India, Oct. 1822, 2012.
Sasaki, A., Yamaji, N., Yokosho, K. and Ma, J. F. OsNramp5 is a major transporter responsible for the uptake ofmanganese in rice. The 8th International Symposium on Plant-Soil Interactions at Low pH. Bengaluru, India, Oct.
18-22, 2012.
Ma, J. F. Silicon transporters in rice. The 8th International Symposium on Plant-Soil Interactions at Low pH. Bengaluru,
India, Oct. 18-22, 2012.
Ma, J. F. Node-based distribution of minerals in rice. International Workshop on Agricultural Resource Utilization andSoil Quality Improvement. Nanjing, China, Oct. 27-31, 2012.
Ma, J. F. Heterologous assay of plant mineral transporter activity in the liverwort Marchantia polymorpha. Marchantia
Workshop 2012. Kumamoto, Japan, Nov. 15-17. 2012.

植物成長制御グループ（Group of Plant Growth Regulation）⑴

Matsuura, K., Sasaki, T., Furuichi, T., Tsuchiya, Y. and Yamamoto, Y. Spectroscopic analyses for secondary structuralchanges of C-terminal hydrophilic domain of aluminum activated malate transport protein. Protein and Peptide
Conference, Venue, China, March 23-25, 2012.
⑵ Yamamoto, Y., Demiral, T., Sasaki, T., Sano, T., Hasezawa, S. and Izumi, Y. Mechanisms of aluminum-induced cell deathin plant cells. 8th International Symposium on Plant-Soil Interactions at Low pH, Bengaluru, India, October 18-22,
2012.

24

分子生理機能解析グループ（Group of Molecular and Functional Plant Biology）⑴

Katsuhara, M., Kaneko, T., Horie, T., Tsuji, N. and Shibasaka, M. Osmotic-induced reduction of root hydraulicconductivity is essential as an early response in salt/osmotic tolerance. Gordon Research Conference – Salt &Water Stress In Plants. Hong Kong, China, June 24-29, 2012.

環境生物ストレスユニット（Biotic Stress Unit）

植物・微生物相互作用グループ（Group of Plant-Microbe Interactions）
⑴
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⑸

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⒀

Ngamau, C.N., Murage, H., and Tani, A. Identification of endophytic bacteria associated with rice seed in Kenya. Kenya
Rice Researcher Forum Symposium. Nairobi, Kenya, Feb. 29, 2012.
Chiba, S., Kondo, H., Tani, A., Saisho, D., Sakamoto, W., Kanematsu, S. and Suzuki, N. Horizontal transfer of genome
sequences of non-retroviral RNA. The 2nd Korea-Japan Joint Symposium and the 2012 Annual Meeting of PSJ
Fukuoka International Congress Center, Japan, Mar. 27-30, 2012.
Suzuki, N. Viruses as biological control (virocontrol) agents of plant fungal pathogens. 2012 Fuzhou International
Forum on Plant-Microbe Interactions. Fujian Agriculture and Forestry University, Fuzhou, Fujian 350002, PR
China, May 22-27, 2012.
Suzuki, N. Fungal Viruses and Virocontrol. The 2012 EEIMTD International Conference on Ecology, Etiology andIntegrated Management of Forest and Fruit Tree Diseases. National Taiwan University, Taipei, Taiwan, May 24-25,
2012.
Eusebio-Cope, A. and Suzuki, N. Mycoreovirus 1 rearrangements generated in dcl2 deletion mutant of the chestnut
blight fungus, Cryphonectria parasitica. The 31 stAnnual Meeting of American Society for Virology. Madison,
Wisconsin, USA, Jul. 21-25, 2012.
Chiba, S., Kondo, H., Kanematsu, S. and Suzuki, N. Evolutionary history of the family Partitiviridae: Insight from theviewpoint of paleovirology. The 31st Annual Meeting of American Society for Virology, Madison, Wisconsin, USA,
Jul.21-25, 2012.
Nakagawa, T., Mitsui, R., Tani, A., Sasa, K., Tashiro, S., Iwama, T., Hayakawa, T. and Kawai, K. A catalytic role of XoxF1
as La3+-dependent methanol dehydrogenase in Methylobacterium extorquens strain AM1. Gordon Research
Conference. Molecular basis of microbial one-carbon metabolism. Lewiston, ME, USA, Aug. 5-10, 2012.
Eusebio-Cope, A. and Suzuki, N. Further genome rearrangement of Mycoreovirus 1 segment 4 deletion mutant virus(MyRV1/S4ss) in an RNA silencing defective host. The 11th Awaji International Forum on Infection and Immunity.
Awaji Yumebutai International Conference Center, Awaji, Hyogo, Japan, Sep. 11-14, 2012.
Sanchez, Z., Ota, T., Tani, A. and Kimbara, K. Monitoring system for biofilm architecture and development using a
multichannel microdevice. IBS. 15th International Biotechnology Symposium and Exhibition. EXCO, Daegu, Korea,
Sep. 16-21, 2012. Award: IBS 2012 President Poster Award.
Suzuki, N., Chiba, S., Kanematsu, S. and Kondo, K. Viruses as virocontrol agents of plant fungal pathogens. The 34th
Naito Conference: Infection, Immunity and their Control for Health: Mucosal Barrier, Pathogen and Vaccine.
Châteraisé Gateaux Kingdom SAPPORO, Japan, Oct.16-19, 2012.
Tamada, T., Kondo, H., Chiba, S. and Andika, I. B. Sugar-beet rhizomania caused by beet necrotic yellow vein virus:
virulence, phylogeography and molecular epidemiology. First International Symposium on Plant-Microbe
Interaction. Hangzhou, China, Oct. 20-22, 2012.
Mwashasha, M.R., Hunja, M. and Tani, A. Screening of bacterial and fungal isolates for their plant growth promoting
activities. The 7th JKUAT Scientific, Technological, and Industrialization Conference. Nairobi, Kenya, Nov. 15,
2012.
Luque, D., Pérez-Mata, C., Suzuki, N., Kanematsu, S., Havens, W., Ghabrial, S. A., Carrascosa, J.L. and Castón, J. R.
Heterodimers as the structural unit of T=1 of Rosellinia ncatrix quadrivirus 1. The 11th International Symposium
on Double-Stranded RNA Viruses. San Juan, Puerto Rico, Nov. 27- Dec. 1, 2012.

植物・昆虫間相互作用グループ（Group of Plant-Insect Interactions）⑴

Bao, W. X. and Sonoda, S. Pyrethroid resistance in melon thrips, Thrips palmi Karny. XXIV International Congress of25

Entomology. Daegu, Korea, Aug. 19-25, 2012.
Galis, I. and Baldwin, I.T. Contribution of metabolomics and transcriptomics to understanding of plant defense against
herbivores. XXIV International Congress of Entomology. Daegu, Korea, Aug. 19-25, 2012.
⑶ Sonoda, S. Frequencies of the M918I, T929I and L1014F mutations in the sodium channel of the diamondback moth inChina, Thailand and Japan. XXIV International Congress of Entomology. Daegu, Korea, Aug. 19-25, 2012.
⑷ Sonoda, S. Organophosphate resistance in the laboratory and field strains of the diamondback moth. International
Seminar on the Development of Insecticide Resistance and Its Management in the Diamondback Moth. Nagoya,Japan, Aug. 27, 2012.
⑸ Wari, D., Sonoda, S. and Kohara, Y. Suqingerile Phytoseiid mite species composition in Japanese peach orchards
estimated using quantitative sequencing. XXIV International Congress of Entomology. Daegu, Korea, Aug. 19-25,
2012.
⑹ Galis, I. Metabolic and structural changes in plants exposed to biotic stress conditions. The 6th Bio-energy &Biotechnology Symposium. Gwangju, Korea, Nov. 23, 2012.
⑵

遺伝資源ユニット（Genetic Resources Unit）

ゲノム多様性グループ（Group of Genome Diversity）⑴

Sato, K., Takeda, K., Kanamori, H., Matsumoto, T., and Komatsuda, T. Identification of grain dormancy Qsd1 from wildbarley. International Plant and Animal Genome Conference XX. San Diego, USA, Jan. 14, 2012.
⑵ Sato, K., and Ma, J. F. Development of recombinant chromosome substitution lines for Aluminium tolerance in barley.
11th International Barley Genetics Symposium. Hangzhou, China, April 15-20, 2012. p. 205-209.

ゲノム育種ユニット（Applied Genomics Unit）

核機能分子解析グループ（Group of Nuclear Genomics）⑴

Ogura, Y. and Murata, M. Generation and analysis of expressed sequence tags in rye. 6th International Crop Science
Congress. Bento Gonçalves, Brazil, August 6-10, 2012.

ゲノム制御グループ（Group of Genome Regulation）⑴

Ezaki, B. and Higashi, A. Characterization of Al tolerance mechanisms in a wild plant, Andropogon virginicus L. 10th
International Congress on Plant Molecular biology. Jeju, Korea, Oct. 21-26, 2012.
⑵ Himi, E. Red grain colour gene (R) of wheat is a Myb-type transcription factor. Kenya Agricultural Research Institute
Seminar. Njoro, Kenya, Mar. 2, 2012.
⑶ Gichuhi, E., Himi, E., Takahashi, H. and Maekawa, M. QTL analysis for important characters in LIA rice and utilizationof LIA rice characters in Basmati rice. Jomo Kenyatta University of Agriculture and Technology The Seventh
JKUAT Scientific, Technological and Industrialisation conference. Nairobi, Kenya, Nov. 15-16, 2012.

26

講演およびシンポジウム発表（List of Domestic Conferences and Symposia）
大気環境ストレスユニット（Atmospheric Stress Unit）

光環境適応研究グループ（Group of Plant Light Acclimation Research）
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加藤裕介・坂本亘：FtsH, DEG プロテアーゼによる光化学系 II 反応中心タンパク質 D1 の協調的分解 . 日本植物生理学会第 53 回年会 , 京都 , 3 月 16-18 日 , 2012. (Kato, Y. and Sakamoto, W.: Cooperative degradation in the PSII D1
protein mediated by FtsH and Deg proteases. 53th Annual Meeting of the Japanese Society of Plant Physiologists,
March 16-18, 2012, Kyoto)Tang, L. Y. and Sakamoto, W.: Ribonucleotide reductase complex activity controls plastid DNA degradation during
Arabidopsis pollen development. 53 th Annual Meeting of the Japanese Society of Plant Physiologists, March 16-18,
2012, Kyoto
Zhang L., Kato, Y., Saigo, K., Otter, S., Vothknecht, U. C. and Sakamoto, W.: Essential role of VIPP1 in chloroplastenvelope integrity maintenance rather than thylakoid membrane biogenesis in Arabidopsis. 53th Annual Meeting of
the Japanese Society of Plant Physiologists, March 16-18, 2012, Kyoto
石崎龍二・末次舞・家常祐弥・加藤祐介・大和政秀・粟野達也・坂本亘・岩瀬剛二・上中弘典：菌根共生と色素体の進化から考察するツツジ科植物の無葉緑化 . 日本植物生理学会第 53 回年会 , 京都 , 3 月 16-18 日 , 2012.
( Ishizaki, R., Suetsugu, M., Ietsune, Y., Kato, Y., Yamato, M., Awano, T., Sakamoto, W., Iwase, T. and Kaminaka
H.: Shifting to achlorophylly in the plants Ericaceae discussed from knowledge about mycorrhizal symbiosis andplastid evolution. 53th Annual Meeting of the Japanese Society of Plant Physiologists, March 16-18, 2012, Kyoto)
中野亮平・松島良・永野淳・深尾陽一朗・藤原正幸・近藤真紀・西村幹夫・西村いくこ : シロイヌナズナ液胞
タンパク質 ERMO3 は転写因子 NAI1 と協調して小胞体形態維持に関わる . 日本植物生理学会第 53 回年会 ,京 都 , 3 月 16-18 日 , 2012. ( Nakano, R. T., Matsushima, R., Nagano, A. J., Fukao, Y., Fujiwara, M., Kondo, M.,
Nishimura, M. and Hara-Nishimura, I.: ERMO3, a Vacuolar Protein, Is Involved in Maintenance of ER Morphology
in a Coordinated Manner with NAI1 Transcription Factor. 53th Annual Meeting of the Japanese Society of Plant
Physiologists, March 16-18, 2012, Kyoto)
松島良 : 澱粉粒の形状決定に関する細胞生物学的研究 . 第 52 回澱粉研究懇談会 , 神戸 , 6 月 6-8 日 , 2012. (Matsushima,
R.: Cytological study of starch grain morphologies. 52th Starch Round Table, June 6-8, 2012, Kobe)
阿久澤さゆり・松島良・花城勲・伊藤紀美子 : 新規アミロライスの胚乳および分離澱粉の構造解析とレオロジー特性 .
日本食品科学工学会第 59 回大会 , 札幌 , 8 月 29-31 日 , 2012. (Akuzawa, S., Matsushima, R., Hanashiro, I. and Ito
K.: Rheological properties and structures of purified starch derived from novel high-amylose rice endosperm. 59th
Annual Meeting of the Japanese Society for food science and technology, August 29-31, 2012, Sapporo)
高橋寛・峰村貴央・松島良・藤田直子・阿久澤さゆり : 米澱粉の物性制御と利用特性に関する研究 . 日本食品科学工学会第 59 回大会 , 札幌 , 8 月 29-31 日 , 2012. (Takahashi, H., Minemura, T., Matsushima, R., Fujita N. andAkuzawa, S.: Control of physical properties of rice starch. 59th Annual Meeting of the Japanese Society for foodscience and technology, August 29-31, 2012, Sapporo)
古跡満美子・松島良・伊藤 健・和久井健司・阿久澤さゆり : アピオス (Apios americana Medikus) 分離澱粉のレ
オロジー特性と利用性 . 日本食品科学工学会第 59 回大会 , 札幌 , 8 月 29-31 日 , 2012. (Koseki, M. Matsushima,
R. Ito K., Wakui, K. and Akuzawa, S.:,Rheological properties of purified starch derived from Apios americana
Medikus. 59 th Annual Meeting of the Japanese Society for food science and technology, August 29-31, 2012,
Sapporo)松島良・前川雅彦・藤田直子・坂本亘 : イネの胚乳のアミロプラストが巨大化する ssg4 変異体の解析 . 日本育種 学 会 第 122 回 講 演 会 , 京 都 , 9 月 14-15 日 , 2012. (Matsushima, R., Maekawa, M. Fujita, N. and Sakamoto,W.: Molecular characterization of ssg4, a large amyloplast mutant of rice. 122th Annual Meeting of the JapaneseSociety of Breeding, September 14-15, 2012, Kyoto)
藤田直子・豊澤佳子・松島良・川越靖・中村保典 : 澱粉粒の形態に影響を与える要因 . 日本育種学会第 122 回講演会 ,京都 , 9 月 14-15 日 , 2012. (Fujita, N., Toyosawa, Y. Matsushima, R., Kawagoe, Y. and Nakamura, Y.: The factor on
the morphology of starch granules. 122th Annual Meeting of the Japanese Society of Breeding, September 14-15,
2012, Kyoto)
加藤裕介・坂本亘：光化学系 II 修復サイクルにおける D 1 タンパク質分解メカニズム . 日本植物学会第 76 回大会 , 姫路 , 9 月 15-17 日 , 2012. (Kato, Y. and Sakamoto, W.: Mechanism of D1 protein degaradation in PSII repair
cycle. 76th Annual Meeting of the Botanical Society of Japan, September 15-17, 2012, Himeji)
藤田直子・豊澤佳子・松島良・川越靖・中村保典 : 澱粉粒の形態が激変する二重変異体イネの解析 . 日本応用糖27

質 科 学 会 第 61 回 大 会 , 東 京 , 9 月 19-21 日 , 2012. (Fujita, N., Toyosawa, Y. Matsushima, R., Kawagoe, Y. andNakamura, Y.: Deficiency of Starch synthase (SS)IIIa and SSIVb leads to dramatic changes in starch granulemorphology in rice endosperm. 61th Annual Meeting of The Japanese Society of Applied Glycoscience. September
19-21, 2012, Tokyo)⒁ 坂本亘：葉緑体包膜の品質管理における VIPP1 タンパク質の役割．二酸化炭素資源化を目指した植物の物質生産
力強化と生産物活用のための基盤技術の創出 . 合同班会議 , 北海道 , 9 月 27-28 日 , 2012. (Sakamoto, W.: Roleof VIPP1 protein in quality control of chloroplast envelope. Creation of essential technologies to utilize carbon
dioxide as a resource through the enhancement of plant productivity and the exploitation of plant products Joint
meeting, September 27-28, 2012, Hokkaido)⒂ Zhang, L.: Function of VIPP1 C-terminal region in Arabidopsis. 二酸化炭素資源化を目指した植物の物質生産力強化と生産物活用のための基盤技術の創出 . 合同班会議 , 北海道 , 9 月 27-28 日 , 2012. (Zhang, L.: Creation of essential
technologies to utilize carbon dioxide as a resource through the enhancement of plant productivity and the
exploitation of plant products Joint meeting, September 27-28, 2012, Hokkaido)⒃ 加藤裕介 : 光化学系 II 修復サイクルにおける D1 タンパク質分解メカニズム . 二酸化炭素資源化を目指した植物の物質生産力強化と生産物活用のための基盤技術の創出 . 合同班会議 , 北海道 , 9 月 27-28 日 , 2012. (Kato, Y.:
Mechanism of D1 protein degradation in PSII repair cycle. Creation of essential technologies to utilize carbon
dioxide as a resource through the enhancement of plant productivity and the exploitation of plant products Joint
meeting, September 27-28, 2012, Hokkaido)

細胞分子生化学グループ（Group of Cytomolecular Biochemistry）⑴⑵⑶

金森太治郎・Gusev, O., Bingham, G., Levinskikh, M., Sychev, V., Hummerick, M., Wheeler, R., 今野晴義・杉本 学：
宇宙環境で生育するミズナの遺伝子発現解析．日本農芸化学会中四国支部第 32 回講演会，鳥取，1 月 21 日，
2012，p. 33．(Kanamori, T., Gusev, O., Bingham, G., Levinskikh, M., Sychev, V., Hummerick, M., Wheeler, R. and
Sugimoto, M.: Expression of gene in Mizuna grown in space environment. 32th Annual Meeting of Japan Society for
Bioscience, Biotechnology, and Agrochemistry, January 21, 2012, Tottori)
金 森 太 治 郎・ 今 野 晴 義・Gusev, O., Bingham, G., Levinskikh, M., Sychev, V., Hummerick, M., Wheeler, R., 杉 本
学：宇宙環境で生育するミズナの細胞壁代謝関連酵素遺伝子の発現．日本宇宙生物科学会第 26 回大会，徳島，9 月 27-29 日，2012，p. 43．(Kanamori, T., Konno, H., Gusev, O., Bingham, G., Levinskikh, M., Sychev, V.,
Hummerick, M., Wheeler, R. and Sugimoto, M. Expression of cell wall-metabolizing enzyme genes in Mizuna grownin space environment. 26th Annual meeting of Japanese Society for Biological Science in Space, September 27-29,
2012, Tokushima)
杉本 学・石井 誠・森 泉・渡辺 智・坂下哲哉・Gusev, O・木原 誠・保木健宏・Levinskikh, M., Sychev, V.,
Novikova, N., Grigoriev, A.：国際宇宙ステーション船外に長期間曝露した大麦種子の生存能力．日本宇宙生物科
学会第 26 回大会，徳島，9 月 27-29 日，2012，p. 43．(Sugimoto, M., Ishii, M., Mori, I., Watanabe, S., Sakashita,T., Gusev, O., Kihara, M., Hoki, T., Levinskikh, ., Sychev, V., Novikova, N. and Grigoriev, A.: Viability of barleyseeds long-term exposed to outer side of international space station. 26th Annual meeting of Japanese Society for
Biological Science in Space, September 27-29, 2012, Tokushima)

環境応答機構研究グループ（Group of Environmental Response Systems）⑴

松浦恭和・森 泉・平山隆志：種子休眠極強白粒コムギの育成（2011）. 第 16 回穂発芽研究会 , 北海道 , 1 月 27 日 ,2012. (Matsuura, T., Mori I.C. and Hirayama T.: Breeding of the strong seed dormancy white-grain wheat (2011).
16th meeting of the society pre-harvest sprouting in cereals, January 27, 2012, Hokkaido)⑵ Ushiyama, S., Otagiri, M., Ino, Y., Umezawa, T. and Hirayama, T.: Unique function of Arabidopsis seed predominant
PP2Cs, AHG1 and AHG3, in ABA response in seeds and early seedlings. Annual Meeting of the Japanese Societyof Plant Physiologists, Mar. 16-18, 2012, Kyoto⑶ 八木祐介・林晋平・小林啓子・平山隆志・中村崇裕：Pentatricopeptide repeat (PPR) モチーフの RNA 認識コー
ド . 第 53 回日本植物生理学会年会 , 京都 , 3 月 16-18 日 , 2012. (Yagi, Y., Hayashi, S., Kobayashi, K., Hirayama,
T. and Nakamura, T.: The RNA recognition code of pentatricopeptide repeat (PPR) motifs. Annual Meeting of the28

Japanese Society of Plant Physiologists. Mar. 16-18, 2012, Kyoto)
泉・泉 実・村田芳行：植物調節物質の標的としての植物イオンチャネル . 第 53 回日本植物生理学会年会 , 京
都 , 3 月 16-18 日 , 2012. (Mori, I. C., Izumi, M. and Murata, Y.: Plant ion channels as the targets of plant regulating
agents. Annual Meeting of the Japanese Society of Plant Physiologists, Mar. 16-18, 2012, Kyoto)⑸ Rayhanur, J., 裏地美杉・諸藤美穂・Hossain, M. A., Islam, M. M., Bloom, R. E., 中村宜督 , McClung, C. R., Schroeder, J. I.,森 泉・村田芳行：気孔閉口運動におけるカタラーゼの役割 . 日本農芸化学会 2012 年度大会 , 京都 , 3 月 22-25 日 ,2012. (Rayhanur, J., Uraji, M., Morofuji, M., Hossain, M. A., Islam, M. M., Bloom, R. E., Nakamura, Y., McClung, C. R,
Schroeder, J. I., Mori, I. C., Murata, Y.: Roles of catalase in stomatal closure. Annual Meeting of Japan Society for
Bioscience, Biotechnology, and Agrochemistry, Mar. 22-25, 2012, Kyoto,)⑹ 中村由貴・森 泉・鈴木信弘・金原和秀・谷明生：Methylobacterium 属細菌の植物への優占化機構の解析 . 日本
農芸化学会 2012 年度大会 , 京都 , 3 月 22-25 日 , 2012. (Nakamura, Y., Mori, I. C., Suzuki, N., Kimbara, K., Tani,A.: Domination mechanism of Methylobacterium to plants. Annual Meeting of Japan Society for Bioscience,
Biotechnology, and Agrochemistry, Mar. 22-25, 2012, Kyoto)⑺ 平山隆志・松浦恭和・牛山翔・林晋平：シロイヌナズナの PARN/AHG2 と AHG2 SUPPRESSOR1 (AGS1) はミトコン
ドリア mRNA の polyA 鎖長調節に関与する . 第 14 回日本 RNA 学会年会 . 仙台 , 7 月 18-20 日 , 2012．(Hirayama, T.,
Matsuura, T., Ushiyama, S. and Hayashi, S.: Arabidopsis PARN/AHG2 and AHG2 SUPPRESSOR1 (AGS1) regulate
the polyA status of mitochondrial mRNA. 14th RNA Meeting, July. 18-20, 2012, Sendai)⑻ 松浦恭和・山下優子・森 泉・平山隆志： コムギ種子のホルモノーム . 拠点共同研究主催ワークショップ「植物ホルモンとイオン輸送体の相互理解」, 岡山 , 8 月 31 日 , 2012.
（Matsuura T., Yamashita Y,. Mori I.C., and Hirayama T.:
Hormonome analysis of the wheat seed. The Workshop supported by Joint Usage/Research Center「An interactive
approach to understanding plant hormones and ion transporters」, August 31, 2012, Okayama）⑼ 森 泉：支援内容の説明 植物ストレス生理解析システム、微量生体物質・植物ホルモン解析装置 . 日本植物学会
第 76 回大会関連集会 , 最先端基盤事業「植物科学最先端研究拠点ネットワーク」利用説明会 , 姫路 , 9 月 15 日，
2012. (Mori, I.: Plant Stress Physiology Analysis System, Trace Biological Substances and Plant Hormone Analysis
System, Guide for support, Japan Advanced Plant Science Research Network. Annual Meeting of The BotanicalSociety of Japan, Sep. 15, 2012, Himeji)⑽ 最相大輔・加藤美奈子・松浦恭和・松島良・持田恵一・平山隆志：ブラキポディウム TILLING ライン整備について . 第一回ブラキポディウムワークショップ , 横浜 , 11 月 7 日 , 2012. (Saisho, D., Kato, M., Matsuura, T.,
Matsushima, R., Mochida, K. and Hirayama, T.: Brachypodium TILLING line: Progress report. 1st Brachypodium
Workshop, Nov. 7, 2012, Yokohama)⑷

森

土壌環境ストレスユニット（Soil Stress Unit）

植物ストレス学グループ（Group of Plant Stress Physiology）
⑴
⑵
⑶
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馬 建鋒：酸性土壌ストレスに打ち克つ植物の知恵．第 53 回日本植物生理学会年会，京都，3 月 16-18 日，2012.
山地直樹・佐々木明正・夏 継星・馬 建鋒：OsNramp3 によるイネの選択的マンガン分配機構．第 53 回日本植物生理学会年会，京都，3 月 16-18 日，2012.
佐々木明正・山地直樹・馬 建鋒：イネのマンガン吸収に関与する輸送体遺伝子の機能解析．第 53 回日本植物生理学会年会，京都，3 月 16-18 日，2012.
Chen, Z.C., Yamaji, N. and Ma, J. F.: A putative ER-localized magnesium transporter OsMGT1 is involved in aluminum
tolerance in rice. 第 53 回日本植物生理学会年会，京都，3 月 16-18 日，2012.
Ueno, D., Chen, Z., Kamiya, T., Iwasaki, K., Kato, S., Yamaji, N. and Ma, J. F.: OsMTP8.1 contribute to Mn tolerance by
sequestering Mn to vacuoles in shoot of rice. 第 53 回日本植物生理学会年会，京都，3 月 16-18 日，2012.
Fujii, Y., Akagi, Y., Chen, Z., Iwasaki, K., Kato, S., Yamaji, N., Ma, J. F. and Ueno, D.: OsMTP9 is required for root-toshoot Mn translocation in rice. 第 53 回日本植物生理学会年会，京都，3 月 16-18 日，2012.
横正健剛・山地直樹・馬 建鋒：ソバのアルミニウム誘導性輸送体遺伝子 (FeIREG2) の機能解析．第 53 回日本植物生理学会年会，京都，3 月 16-18 日，2012.
馬 建鋒：イネヒ素とカドミウム吸収の分子機構．日本薬学会第 132 年会，札幌，3 月 28-31 日，2012.
馬 建鋒：植物のミネラルトランスポーター．第 53 回日本生化学会，中国四国支部例会，岡山，5 月 18 日，2012.
馬 建鋒：植物の遷移金属の輸送体．Plant transporters for transition metals. 第 12 回日本蛋白質科学会年会，名古屋，
6 月 20-22 日，2012.

29

⑾
⑿

馬 建鋒：イネ OsHMA3 過剰発現体の更なる解析．日本土壌肥料学会年会，鳥取，9 月 4-6 日，2012.
山地直樹・夏 継星・馬 建鋒：イネの OsHMA2 による亜鉛およびカドミウムの選択的分配機構．日本土壌肥料学会年会，鳥取，9 月 4-6 日，2012.
⒀ 三谷奈見季・山地直樹・馬 建鋒：ケイ酸輸送体 Lsi1 のケイ酸応答性および組織局在性を制御するプロモーターの解析．日本土壌肥料学会年会，鳥取，9 月 4-6 日，2012.
⒁ 柏野美帆・横正健剛・山地直樹・最相大輔・山根美樹・高橋宏和・佐藤和広・中園幹生・馬 建鋒：オオムギのア
ルミニウム耐性機構の獲得．日本土壌肥料学会年会，鳥取，9 月 4-6 日，2012.
⒂ 横正健剛・山地直樹・馬 建鋒：イネの MATE 遺伝子 OsFRDL2 の更なる機能解析．日本土壌肥料学会年会，鳥取，
9 月 4-6 日，2012.
⒃ 久家徳之・山地直樹・馬 建鋒：イネケイ酸輸送体 Lsi2（SIET1）のホモログ SIET3-5 の解析．日本土壌肥料学会年会，
鳥取，9 月 4-6 日，2012.
⒄ 佐々木明正・山地直樹・馬 建鋒：OsNramp3 によるマンガン分配制御機構．日本土壌肥料学会年会，鳥取，9 月 4-6 日，
2012.

植物成長制御グループ（Group of Plant Growth Regulation）
⑴

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⑷

⑸

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⑺

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佐々木孝行：植物特有のアニオン輸送体 ALMT の多彩な機能 . 第 4 回植物ストレス科学研究シンポジウム , 倉敷 , 3
月 8-9 日 , 2012 (Sasaki, T. Functional diversity of plant specific ALMT-type anion transporter. The 4th Plant Stress
Sicence Sympoisum, Kurashiki, March 8-9, 2012)
山本洋子・Tijen Demiral・佐々木孝行・佐野俊夫・馳澤盛一郎・泉 洋平：植物細胞におけるアルミニウムによる細胞死誘発機構の解析 . 日本植物生理学会 , 京都 , 3 月 16-18 日 , 2012 (Yamamoto, Y., Demiral, T., Sasaki, T., Sano, T.,
Hasezawa, S., Izumi, Y. Mechanism of aluminum-induced cell death in plant cells. Annual Meeting of the JapaneseSociety of Plant Physiologists, March 16-8, 2012, Kyoto)
佐々木孝行・有吉美智代・山本洋子：異種発現系を用いた ALMT1 輸送体の機能解析：各種阻害剤の効果 . 日
本 植 物 生 理 学 会 , 京 都 , 3 月 16-18 日 , 2012 (Sasaki,T., Ariyoshi, M., Yamamoto, Y. Functional analyses of
ALMT transporter in hetelologous system: Effect of inhibitors. Annual Meeting of the Japanese Society of Plant
Physiologists, March 16-8, 2012, Kyoto)
丸山隼人・佐々木孝行・岡崎圭毅・信濃卓郎・和崎淳：リン欠乏及びアルミニウム障害時におけるシロイヌナズナ
野生株およびリンゴ酸分泌変異株の根浸出物の解析 . 日本植物生理学会 , 京都 , 3 月 16-18 日 , 2012 (Maruyama,
H., Sasaki, T., Okazaki, K., Shinano, T., Wasaki, J. Analysis of root exudates from Arabidopsis thaliana wild
type and malate transporter mutants under phosphorus deficiency and aluminum stress. Annual Meeting of theJapanese Society of Plant Physiologists, March 16-8, 2012, Kyoto)
Sasaki, T., Mori, I.C., Furuichi, T., Murata, Y., Yamamoto, Y. Plant-specific ALMT transporter family regulates multiple
physiological functions. 日 本 農 芸 化 学 会 2012 年 度 大 会 , 京 都 , 3 月 23-25 日 , 2012 (Sasaki, T., Mori, I.C.,
Furuichi, T., Murata, Y., Yamamoto, Y. Plant-specific ALMT transporter family regulates multiple physiological
functions. Annual Meeting of the Japan Society for Bioscience, Biotechnology, and Agrochemistry, March 23-25,
2012, Kyoto)
佐々木孝行：植物特異的アニオン輸送体の機能多様性と作物生産性向上への応用 . 平成 24 年度日本農芸化学会東北支部シンポジウム「遺伝子解析による実用研究の新展開」, 秋田 , 6 月 30 日 , 2012 (Sasaki, T. Functional
diversity and application to crop production for plant specific ALMT-type anion transporter. Symposium of Tohoku
Region of the Japan Society for Bioscience, Biotechnology, and Agrochemistry, June 30, 2012, Akita)
山本洋子・泉洋平・信濃卓郎・中村卓司・岡崎圭毅・佐々木孝行：アルミニウム応答におけるエネルギー代謝の関わり :アルミニウム耐性の異なるタバコ培養細胞株の比較解析 . 日本土壌肥料学会 , 鳥取 , 9 月 4-6 日 , 2012 (Yamamoto,Y., Izumi, Y., Shinano, T., Nakamura, T., Okazaki, K., Sasaki, T. Role of energy metabolism in aluminum responses:
Comparative studies of tobacco cell lines exhibiting various degrees of aluminum tolerance. Annual Meeting of
the Japanese Society of Soil Science and Plant Nutrition. September 4-6, 2012 , Tottori)
佐々木孝行・有吉美智代・山本洋子：植物 ALMT 輸送体機能の比較解析 . 日本土壌肥料学会 , 鳥取 , 9 月 4-6 日 ,2012 (Sasaki, T., Ariyoshi, M., Yamamoto, Y. Functional comparison of plant ALMT transporters. Annual Meetingof the Japanese Society of Soil Science and Plant Nutrition, September 4-6, 2012, Tottori)
Sameeullah, M., Sasaki, T., Yamamoto, Y. Role of sucrose transporter (NtSUT1) under normal growth and Al stressconditions in cultured tobacco cells. 日 本 土 壌 肥 料 学 会 , 鳥 取 , 9 月 4-6 日 , 2012 (Sameeullah, M., Sasaki, T.,30

Yamamoto, Y. Role of sucrose transporter (NtSUT1) under normal growth and aluminum stress conditions in
cultured tobacco cells. Annual Meeting of the Japanese Society of Soil Science and Plant Nutrition., September
4-6, 2012, Tottori)⑽ 矢倉興士・丸山隼人・佐々木孝行・和崎淳：シロバナルーピンのクラスター根から単離した ALMT ホモログの解析 .
日本土壌肥料学会 , 鳥取 , 9 月 4-6 日 , 2012 (Yakura, K., Maruyama, H., Sasaki, T., Wasaki, J. Analyses of ALMT
homologue isolated from white lupin. Annual Meeting of the Japanese Society of Soil Science and Plant Nutrition,
September 4-6, 2012, Tottori)⑾ 苅谷耕輝・佐々木孝行・山本洋子：タバコ培養細胞 BY-2 を用いたアルミニウムによる細胞死の解析 . 日本土壌肥料学会 関西支部会 , 倉敷 , 12 月 6 日 , 2012 (Kariya, K., Sasaki, T., Yamamoto, Y. Analyses of aluminum-induced
cell death process in cultured tobacco cell line BY-2. Annual Meeting of Kansai Region of the Japanese Society of
Soil Science and Plant Nutrition, December 6, 2012, Kurashiki)⑿ 山本洋子・佐々木孝行：エネルギー代謝の制御に基づくストレス耐性作物の開発研究 . 「低炭素社会と食の安全・安心を統合した環境生命学的研究」研究発表会．−食料生産の持続性を担保する循環的な環境管理システムの構
築−．岡山 , 12 月 10 日 , 2012 (Yamamoto, Y. and Sasaki, T. Development of stress-tolerance crops, based on thecontrol of energy metabolism. Meeting of Study of environmental and life Science for integration of low carbon
society and food security and safety -Development of environmental managing system which guarantees thesustainability of food production-, December 10, 2012, Okayama)

分子生理機能解析グループ（Group of Molecular and Functional Plant Biology）
⑴

⑵

⑶

⑷

⑸

⑹

辻伸弥・且原真木・柴坂三根夫：浸透圧ストレス下のイネ科植物根水透過性の制御 . 日本植物生理学会 2012 年度年
会 , 京都 , 3 月 16-18 日 , 2012. (Tsuji, N., Katsuhara M. and Shibasaka, M.: Regulation of root hydraulic conductivity
in gramineous plants under osmotic stress. Annual Meeting of the Japanese Society of Plant Physiologists. Mar. 16-18,
2012, Kyoto)
篠野静香・柴坂三根夫・宇都木繁子・且原真木：第 3 の PIP アクアポリンの同定 . 日本植物生理学会 2012 年度年会 ,京都 , 3 月 16-18 日 , 2012. (Sasano, S., Shibasaka, M., Utsugi, S. and Katsuhara, M.: The Third Type of PIP Aquaporins.
Annual Meeting of the Japanese Society of Plant Physiologists. Mar. 16-18, 2012, Kyoto)
且原真木・辻伸弥・金子智之・柴坂三根夫：オオムギとイネの根水透過性制御と浸透圧ストレス応答 . 第 36 回
根研究集会 , 宮城 , 6 月 15-16 日 , 2012. (Katsuhara, M., Tsuji, N., Kaneko, T. and Shibasaka, M.: Regulation of root
hydraulic conductivity and response to osmotic stress in rice and barley. 36th Japanese Society of Root Research
Biannual Meeting, June. 15-16, 2012, Miyagi)
信清裕一・柴坂三根夫・且原真木：オオムギにおける Na 輸送性 CNGC チャンネルの機能解析 . 日本土壌肥料学会
2012 年度鳥取大会 , 鳥取 , 9 月 4-5 日 , 2012. (Nobukiyo, Y., Shibasaka, M. and Katsuhara, M.: Functional analysis of
Na-transporting cyclic nucleotide-gated channels (CNGCs) in barley. Annual Meeting of the Japanese Society of Soil
Science and Plant Nutrition. Sep. 4-6, 2012, Tottori)
篠野静香・柴坂三根夫・且原真木：イネとオオムギの亜ヒ酸輸送性 NIP 型アクアポリン . 日本植物学会第 76 回大会 , 兵庫 ,9 月 15-17 日 , 2012. (Sasano, S., Shibasaka, M., and Katsuhara, M.: As-transporting NIP aquaporins in rice and barley.
Annual Meeting of the Botanical Society of Japan. Sep. 15-17, 2012, Hyogo)
松本研人・飯田聡子・且原真木・柴坂三根夫・篠野静香・小菅桂子：水生植物ヤナギモにおける水輸送タンパク質 PIPの解析 . 日本植物学会第 76 回大会 , 兵庫 , 9 月 15-17 日 , 2012. (Matsumoto, K., Iida, S., Katsuhara, M., Shibasaka,
M., Sasano, S., and Kosuge, K.: Analysis of water-transporting PIP in aquatic Potamogeton oxyphyllus Miq. Annual
Meeting of the Botanical Society of Japan. Sep. 15-17, 2012, Hyogo)

環境生物ストレスユニット（Biotic Stress Unit）

植物・微生物相互作用グループ（Group of Plant-Microbe Interactions）⑴

中村 由貴・森 泉・鈴木 信弘・金原 和秀・谷 明生：Methylobacterium 属細菌の植物への優占化機構の解析．日本 農 芸 化 学 会， 京 都，3 月 22-26 日，2012. (Nakamura, Y., Mori, I.C., Suzuki, N., Kimbara, K. and Tani, A.:
Mechanism of predomination of Methylobacterium species in phyllosphere. Annual Meeting of Japan Society for
Bioscience, Biotechnology, and Agrochemistry. Mar. 22-26, 2012, Kyoto)31

⑵水野 雅之・井口 博之・谷 明生・由里本 博也・阪井 康能：シソに生息する Methylobacterium 属細菌の分布とその特性評価 . 日本農芸化学会大会，京都，3 月 22 -26 日 , 2012. (Mizuno, T., Iguchi H., Tani, A., Yurimoto, H. andSakai, S.: Distribution and characterization of Methylobacterium spp. on perilla leaves and seeds. Annual meetingof the Japanese Society for Bioscience, Biotechnology, and Agrochemistry. Mar. 22-26, 2012, Kyoto)⑶ 田代 晋也・三井 亮司・谷 明生・佐々 健太郎・岩間 智徳・早川 享志・中川 智行・河合 啓一：メチロトローフ細菌
Methylobacterium extorquens のレアアース依存的メタノール代謝における xoxF の機能解析 . 日本農芸化学会大会，京都，3 月 22-26 日 , 2012. (Tashiro, S., Mitsui, R., Tani, A., Sasa, K., Iwama, T., Hayakawa T., Nakagawa,T. and Kawai, K.: Functional analysis of the xoxF gene in the methanol metabolism depending on the rare-earth
in the methylotrophic bacteria Methylobacterium extorquens. Annual meeting of the Japanese Society for
Bioscience, Biotechnology, and Agrochemistry. Mar. 22-26, 2012, Kyoto)⑷ 谷 明生：品種の異なるオオムギに共生するメタノール資化性菌の網羅的ライブラリ作製と宿主生育促進効果の解析 . 日本農芸化学会大会，京都，3 月 22-26 日 , 2012. (Tani, A.: Library and plant-growth promotion effect of
methylotrophic bacteria collected from variety of barley. Annual meeting of the Japanese Society for Bioscience,
Biotechnology, and Agrochemistry. Mar. 22-26, 2012, Kyoto)⑸ 近藤 秀樹・千葉 壮太郎・梅林 絵里・鈴木 信弘：植物の核ゲノム上に見いだされるマイナス鎖 RNA ウイルス様配列．日本植物病理学会大会，福岡，3 月 28-30 日，2012． (Kondo, H., Chiba, S., Umebayashi, E. and Suzuki, N.:
Negative-stranded RNA virus-like sequences found in plant genomic DNAs. The Annual Meeting of the JapanesePhytopathological Society. Mar. 28-30, 2012, Fukuoka)⑹ 田中 徹・Sun Liying・千葉 壮太郎・鈴木 信弘：糖鎖付加欠損変異によるハイポウイルス p29 蛋白質の多機能性への影響．日本植物病理学会大会，福岡，3 月 28-30 日，2012． (Tanaka, T., Sun, L., Chiba, S. and Suzuki, N.:
Effects of glycosylation mutations on multifunctionality of p29 encoded by the prototype hypovirus CHV1-EP713.
The Annual Meeting of the Japanese Phytopathological Society. Mar. 28-30, 2012, Fukuoka)⑺ 田中 徹：ハイポウイルスとマイコレオウイルスが織りなすダイナミックな相互作用．第 31 回岡山病理セミナー，倉敷，5 月
19 日，2012. (Tanaka,T .: Dynamic interplay between a hypovirus and a mycoreovirus. The 31th Okyama Regional
Phytopathology Meeting. May.10, 2012, Kurashiki)⑻ 林 諭昕：新規マイコウイルスの性格付けと宿主範囲の検定法の確立．第 31 回岡山病理セミナー，倉敷，5 月 19日，2012. ( Lin, Y.-H.: Characterization of novel mycoviruses and development of a method for their host range
determination. The 31th Okyama Regional Phytopathology Meeting. May.10, 2012, Kurashiki)⑼ Ana Eusebio-Cope. and Suzuki, N.: Mycoreovirus 1 variants are prone to genome rearrangements in a dcl2 deletionmutant of the chestnut blight fungus, Cryphonectria parasitica. 27th Annual Meeting of the Chugoku/Shikoku
Regional Virology Society. Jun. 23-24, 2012, Yonago.
⑽ 田中 徹・鈴木 信弘：ハイポウイルス多機能性蛋白質 p29 のレオウイルスゲノム再編成誘導能．第 27 回中国四国
ウイルス研究会，米子，6 月 23-24 日，2012． (Tanaka, T. and Suzuki, N.: Induction of mycoreovirus genome
rearrangements by a hypovirus multifunctional protein p29. The 27th Annual Meeting of the Chugoku/Shikoku
Regional Virology Society. Jun. 23-24, Yonago)⑾ 平栗 章弘・植木 尚子・近藤 秀樹・野見山 孝司・一木 ( 植原 ) 珠樹・佐々木 信光・丹生谷 博・笹谷 孝英：ビッグベイン症を示すレタスから見いだされる２種ウイルスの細胞間移行タンパク質の同定 . 日本植物病理学会，
関東部会．東京，9 月 13-14 日，
2012. (Hiraguri, A., Ueki, S., Kondo, H., Nomiyama, T., Ichiki-Uehara, T., Sasaki, N.,
Nyunoya, H. and Sasaya, T.: Identification of cell-to-cell movement proteins of two viruses from big-vein disease of
lettuce. Kntou Division Meeting of the Japanese Phytopathological Society. Sep.13-14 , 2012, Tokyo）⑿ 鈴木 信弘：ウイルスいろいろ：目立たないウイルス、植物の守り神となるウイルス．みちのくウイルス塾， 独立
行政法人国立病院機構仙台医療センター，7 月 14-15 日，2012．(Suzuki, N. : Diverse viruses: cryptic viruses,
guardian viruses for plants. The 11th Virus Michinoku Summer School. Sendai Medical Center, Jul. 14-15, 2012,
Sendai)⒀ 鈴木 信弘：マイコウイルスとヴァイロコントロール．植物感染生理談話会，滋賀，8 月 30 日 -9 月 1 日，2012. (Suzuki,
N.: Mycoviruses and Virocontrol. The 47th PSJ Plant-Microbe Interactions Symposium. Aug .30-Sep.1, 2012, Shiga)⒁ Lin, Y.-H., Chiba, S., Kondo, H., A, Kanematsu, S. and Suzuki, N.: Effects of defective-interfering RNA on symptom
induction and replication of a novel partitivirus determined in a heterologous fungal host. 60th Annual Meeting of
the Japanese Society for Virology. Nov.13-15, 2012, Osaka.
⒂ 近藤 秀樹・千葉 壮太郞・鈴木 信弘：マイナス鎖 RNA ウイルスの菌類への感染の可能性．第 60 回ウイルス学会
学術集会，グランキュ̶ブ大阪（大阪国際会議場），11 月 13-15 日，2012．(Kondo, H., Chiba, S. and Suzuki,
N.: Evidence for negative-strand RNA virus infection in fungi. 60th Annual Meeting of the Japanese Society for32

Virology.Nov.13-15, 2012, Osaka)

植物・昆虫間相互作用グループ（Group of Plant-Insect Interactions）
⑴
⑵

⑶
⑷

⑸
⑹
⑺

⑻

⑼

⑽

⑾

⑿

Galis, I.: Transcriptional regulation of defense against herbivores in wild tobacco species Nicotiana attenuata.
Workshop Jasmonate Signaling and Plant Defense against Insect Herbivores . Feb. 24, 2012, Kurashiki.
園田昌司 : 草刈による除草がモモ圃場における昆虫の生物多様性に及ぼす影響について . 農研機構近畿中国四国
農業研究センター問題別研究会虫害分科会 , 福山 , 3 月 5-7 日 , 2012. (Sonoda, S.: Effects of mowing on insect
diversity in peach orchards. Mar. 5-7, 2012, Fukuyama)
Galis, I.: New insights into regulation of jasmonate mediated defense responses against herbivores in tobacco plants. 4th
Plant Stress Science Symposium. Mar. 8-9, 2012, Kurashiki.
園田昌司・宮田 正・史 雪岩 : コナガの合成ピレスロイド剤抵抗性に関わるナトリウムチャネルのアミノ酸変異の頻度−日本、中国、タイ系統の比較− . 日本農薬学会第 37 回大会 , 岡山 , 3 月 14-16 日 , 2012. (Sonoda, S.
Miyata, T. and Shi, X.: Frequencies of amino acid mutations in the sodium channel of the diamondback moth inChina, Thailand and Japan. Mar. 14-16, 2012, Okayama)
園田昌司 : 殺虫剤抵抗性機構の解析と今後の課題について . 農林水産省薬剤抵抗性病害虫対策検討会 , 東京 , 3 月 16
日 , 2012. (Sonoda, S.: Insecticide resistance mechanisms and management. Mar. 16, 2012, Tokyo)
Galis, I., Oh, Y. and Baldwin, I.T.: Transcriptional regulation of plant defenses against herbivores. 53rd Annual Meeting of
the Japanese Society of Plant Physiologists. Mar. 16-18, 2012, Kyoto.
園田昌司・小原洋子・斯欽格日楽・豊島真吾・岸本英成・日本典秀 : 量的塩基配列決定法を用いたモモ圃場におけるカブリダニの種構成の推定 . 第 56 回日本応用動物昆虫学会大会，奈良，3 月 27-29 日 , 2012. (Sonoda, S.,
Kohara, Y., Siqingerile, Toyoshima, S., Kishimoto, H. and Hinomoto, N.: Phytoseiid mite species composition in
Japanese peach orchards estimated using quantitative sequencing. Mar. 27-29, 2012, Nara)
包文学・伊藤政雄・村井 保・奈良井祐隆・園田昌司 : ミナミキイロアザミウマの合成ピレスロイド剤抵抗性機構
について (III). 第 56 回日本応用動物昆虫学会大会 , 奈良，3 月 27-29 日 , 2012. (Bao, W. X., Ito, M., Murai, T.,
Narai, Y. and Sonoda, S.: Pyrethroid resistance mechanisms of the melom thrips, Thrips palmi. Mar. 27-29, 2012,
Nara)
包文学・伊藤政雄・村井 保・奈良井祐隆・園田昌司 : ミナミキイロアザミウマのピレスロイド剤抵抗性に関わる
ナトリウムチャネルの変異について . 平成 24 年度日本応用動物昆虫学会中国支部・日本昆虫学会中国支部合同
例会 , 岡山 , 10 月 12 日 , 2012. (Bao, W. X., Ito, M., Murai, T., Narai, Y. and Sonoda, S.: Amino acid mutation in thesodium channel involving in pyrethroid resistance of the melom thrips, Thrips palmi. Oct. 12, 2012, Okayama)
園田昌司 : コナガの殺虫剤に対する抵抗性および適応機構 . 農研機構九州沖縄農業研究センター九州昆虫セミ
ナ ー , 熊 本 , 10 月 22 日 , 2012. (Sonoda, S.: Resistance and adaptation mechanisms against insecticide in the
diamondback moth. Oct. 22, 2012, Kumamoto)園田昌司 : 難防除害虫の薬剤抵抗性メカニズム . 農研機構野菜茶業研究センター革新的農業技術習得支援事業 ( 野菜 の 難 防 除 害 虫 の IPM 技 術 ), 津 , 10 月 24-26 日 , 2012. (Sonoda, S.: Insecticide resistance mechanisms ofimportant pests. Oct. 24-26, 2012, Tsu)
園田昌司 : コナガのピレスロイド剤抵抗性 . NIAS シンポジウムポストゲノム時代の害虫防除研究のあり方 - 第 5 回
殺虫剤抵抗性問題の最前線 , 東京 , 11 月 15 日 , 2012. (Sonoda, S.: Pyrethroid resistance of the diamondback
moth. Nov. 15, 2012, Tokyo)

遺伝資源ユニット（Genetic Resources Unit）

ゲノム多様性グループ（Group of Genome Diversity）⑴

佐藤和広・武田和義・金森裕之・松本隆・小松田隆夫：オオムギ種子休眠性 Qsd1 の同定 . 日本育種学会講演会 . 宇都宮 ,3 月 29-30 日 , 2012. (Sato, K., Takeda, K., Kanamori, H., Matsumoto, T. and Komatsuda, T.: Identification of grain
dormancy Qsd1 in barley. Annual Meeting of Japanese Society of Breeding, March 29-30, 2012, Utsunomiya）⑵ Iehisa, M. Shimizu, A., Sato, K., Nasuda, S. and Takumi, S.: Large scale analysis of mRNAs from seedling leaves and SNP
detection in Aegilops tauscii. Annual Meeting of Japanese Society of Breeding, March 29-30, 2012, Utsunomiya.
⑶ 石井誠・田中裕之・佐藤和広：アゼルバイジャンにおける不斉条オオムギの分布 . 日本育種学会講演会 . 宇都宮 ,33

3 月 29-30 日 , 2012. (Ishii, M., Tanaka, H. and Sato, K.: Distribution of irregurale row type in Azerbaijan. Annual
Meeting of Japanese Society of Breeding, March 29-30, 2012, Utsunomiya）⑷ 佐藤和広・元井由加：cDNA 解析によるオオムギゲノム育種用 DNA マーカーの開発 . 日本育種学会講演会 . 京都 ,9 月 14-15 日 , 2012. (Sato, K., and Motoi, Y.: Development of DNA markers for barley genome breeding by cDNA
analysis. Annual Meeting of Japanese Society of Breeding, September 14-15, 2012, Kyoto）⑸ 佐藤和広・元井由加：cDNA 解析によるオオムギゲノム育種用 DNA マーカーの開発 . 日本育種学会講演会 . 京都 ,9 月 14-15 日 , 2012. (Sato, K., and Motoi, Y.: Development of DNA markers for barley genome breeding by cDNA
analysis. Annual Meeting of Japanese Society of Breeding, September 14-15, 2012, Kyoto）⑹ 最相大輔・藤井美帆・馬建鋒・佐藤和広：オオムギのアルミニウム耐性獲得の進化過程 . 日本育種学会講演会 . 京
都 , 9 月 14-15 日 , 2012. (Saisho, D., Fujii, M., Ma, J.F. and Sato, K.: Evolutionary process of aluminium tolerance
acquisition in barley. Annual Meeting of Japanese Society of Breeding, September 14-15, 2012, Kyoto）⑺ 湯尾崇央・金森裕之・松本隆・Lundqvist Udda・佐藤和広・一井眞比古・Jobling A. Stephen・武田真：オオム
ギ短芒遺伝子 lks2 のポジショナルクローニング . 日本育種学会講演会 . 京都 , 9 月 14-15 日 , 2012. (Yuo, T.,
Kanamori, H., Matsumoto, T., Lundqvist, U., Sato, K., Ichii, M., Jobling, A.S. and Taketa, S.: Positional cloning of ashort awn gene lks2 in barley. Annual Meeting of Japanese Society of Breeding, September 14-15, 2012, Kyoto）⑻ 水野信之・清水顕史・佐藤和広・宅見薫雄・新田みゆき・那須田周平：RNA-seq 法による一粒系コムギにおける SNP 探索 .
京都 , 9 月 14-15 日 , 2012. (Mizuno, N., Shimizu, A., Sato, K., Takumi, S., Nitta, M., and Nasuda, S.: Detection of
SNPs by RNA-seq method in Einkorn wheat. Annual Meeting of Japanese Society of Breeding, September 14-15,
2012, Kyoto）⑼ 佐藤和広： オオムギゲノム配列の概要 . ムギ類研究会 . つくば , 11 月 28-29 日（Sato, K.: Outline of barley genome
sequence. Triticeae meeting, November 28-29, 2012, Tsukuba）

遺伝資源機能解析グループ（Group of Genetic Resources and Functions）
⑴

⑵

⑶

⑷

⑸

⑹

⑺

氷見英子・前川雅彦：コムギのフラボノイド系色素合成に関与する anthocyanin synthase (ANS) 遺伝子について．
第 121 回 日本 育種 学 会講 演会 , 宇都 宮 , 3 月 29-30 日 , 2012. (Himi, E. and Maekawa, M.: Characterization ofanthocyanidin synthase (ANS) gene related with flavonoid biosynthesis in wheat. The 121th meeting of JapaneseSociety of Breeding. March 29-30, 2012, Utsunomiya)
湯尾崇央・佐藤友彦・金森裕之・松本隆・武田 真：オオムギ皮性遺伝子 Nud 座周辺 600 kbp の配列及び近縁種における Nud ホモログの解析 , 日本育種学会第 121 回講演会 , 宇都宮 , 3 月 29 日 , 2012．育種学研究 14( 別 1) p.119.
(Yuo, T., Sato, T., Kanamori, H., Matsumoto, T. and Taketa, S.: Analysis of 600 kb-contig sequence spanning thebarley Nud locus and nud homologs from allied species. The 121th meeting of Japanese Society of Breeding. March
29, 2012, Utsunomiya)
掛田克行・青海滋行・松田彩乃・武田 真：BSMV-VIGS によるオオムギ Nud 遺伝子の発現抑制と皮裸性の変化 .
日本育種学会第 121 回講演会 , 宇都宮 , 3 月 30 日 , 2012．育種学研究 14( 別 1) p.191. (Kakeda, K. Seigai, M.,
Matsuda, A. and Taketa S.: Silencing of the barley Nud gene by BSMV-VICS and alternations in the covered/naked
caryopsis phenotype. The 121th meeting of Japanese Society of Breeding. March 30, 2012, Utsunomiya)
氷見英子・武田真・前川雅彦：オオムギのプロアントシアニジン欠失突然変異体 (ant 突然変異体 ) を利用した
種子色が種子休眠に及ぼす影響について．第 122 回日本育種学会講演会 , 京都 , 9 月 14-15 日 , 2012．(Himi,
E., Taketa, S. and Maekawa, M.: Influence of the grain color on grain dormancy in barley proanthocyanidin-freemutants (ant mutants). The 122 th meeting of Japanese Society of Breeding. September 14, 2012, Kyoto)
井上賢彦・大田毅・湯尾崇央・武田真・一谷勝之・河瀬眞琴・福永健二：アワポリフェノール酸化酵素 (PPO) 遺伝
子の 6bp 挿入型変異とその地理的分布．第 122 回日本育種学会講演会，京都，9 月 14-15 日，2012．(Inoue, T.,
Ohta, T., You, T., Taketa, S., Ichitani, K., Kawase, M. and Fukunaga, K.: 6 bp insert variation of polyphenol oxidase(PPO) gene in foxtail millet and its geographical distribution. The 122th meeting of Japanese Society of Breeding.
September 15, 2012, Kyoto)
湯尾 崇央・金森裕之・松本隆・Lundqvist, U.・佐藤和広・一井眞比古・Jobling, S.A.・武田真：オオムギ短芒遺伝
子 lks2 のポジショナルクローニング．第 122 回日本育種学会講演会，京都，9 月 14-15 日，2012．(Yuo, T.,
Kanamori, H., Matsumoto, T., Ludqvist, U., Sato, K., Ichii, M., Jobling, S., Taketa, S.: Positional cloning of a shortawn gene lks2 in barley. The 122th meeting of Japanese Society of Breeding. September 15, 2012, Kyoto)
Himi, E.: Influence of the grain color on grain dormancy in wheat and barley. IPSR-Kenya Day, Kurashiki, October 19,

34

2012, Kurashiki
西村 秀希・氷見 英子：植物研で始めるマイクロアレイ 〜依頼から解析まで〜．Agilent マイクロアレイ基盤の整備とマイクロアレイ実験の展望 (2)，倉敷，11 月 30 日，2012．(Nishimura, H. and Himi, E.: Beginning microarrayexperiments in IPSR ~From request to analysis~. Agilent microarray Workshop, November 30, 2012, Kurashiki)⑼ 氷見英子・武田真：「休眠の強い白粒コムギは出来るのか？〜オオムギ ant 突然変異体を利用した実験モデル〜」．
第 17 回穂発芽研究会，九州沖縄農業研究センター 筑後・久留米研究拠点（筑後），福岡県筑後市，12 月 18 日，
2012．(Himi, E. and Taketa, S.: Could we breed white grain wheat with strong dormancy? From trial experiments
using barley ant mutants. The 17th dormancy research meeting, December 18, 2012, Chikugo)⑻

野生植物グループ（Group of Wild Plant Science）⑴⑵

山下 純：大阪市立大学理学部附属植物園に野生するシダ植物と種子植物の種多様性調査と評価 . 第 26 回ニッセ
イ財団助成研究ワークショップ , 都市と森の共生をめざして . 大阪 , 1 月 7 日 , 2012. (Yamashita, J.: Species
diversity of the vascular plants in the Botanical Gardens of Osaka City University, and its conservasion-biologicalimportance. The 26th Nissay Foundation work shop, January 7, 2012, Osaka)
山下 純・岡崎 純子・植松 千代美：大阪市立大学理学部附属植物園における雑草フロラ〜過去と現在〜 . 日本雑草学会第 51 回大会 , つくば , 4 月 4-5 日 , 2012. (Yamashita, J., Okazaki, J. and Uematsu, C.: Weed flora of the
Botanical Gardens of Osaka City University 〜 change of species constitution during the last 50 years 〜 . The 51th
Annual Meeting of Weed Science Society of Japan, April 4-5, 2012, Tsukuba)

ゲノム育種ユニット（Applied Genomics Unit）

核機能分子解析グループ（Group of Nuclear Genomics）
⑴

⑵

⑶

⑷

長岐清孝・山本真紀・向井康比己・村田稔：動原体特異的ヒストンのネギ属染色体観察への利用〜新教材としての可能性〜 . 日本遺伝学会第 84 回大会，福岡市，9 月 24-26 日 , 2012. (Nagaki, K., Yamamoto, M., Yamaji, N.,
Mukai, Y. and Murata, M.: Utilization of CENH3 for chromosome observation in Allium species. Annual meeting of
Genetics Society of Japan, September 24-26, 2012, Fukuoka)
村田稔・柴田洋・藤本聡・長岐清孝：シロイヌナズナにおける染色体再編成の誘発とゲノム安定性 . 日本遺伝学会
第 84 回大会，福岡市，9 月 24-26 日 , 2012. (Murata, M., Shibata, F., Fujimoto, S. and Nagaki, K.: Induction ofchromosomal rearrangements and genome stability in Arabidopsis. Annual meeting of Genetics Society of Japan,
September 24-26, 2012, Fukuoka)
長岐清孝・山地直樹・村田稔：染色体観察のための組織免疫染色法の開発 . 染色体学会第 63 回年会，旭川市，10
月 5-7 日，2012. (Nagaki, K., Yamaji, N. and Murata, M.: Development of an immunohistochemical method forchromosome observation. Annual meeting of Chromosome Society of Japan, October 5-7, 2012, Asahikawa)
長岐清孝・山地直樹・村田稔：タマネギ根端を材料に用いた組織免疫染色による分裂細胞の 3 次元解析 . バイオイ
メージング・インフォマティクス 2012，神戸市，11 月 1-2 日，2012. (Nagaki, K., Yamaji, N. and Murata, M.: 3D
analysis of onion cell divisions by an immunohistochemical method. Bio-imaging informatics 2012, November 1-2,
2012, Kobe)

ゲノム制御グループ（Group of Genome Regulation）⑴

力石和英：コムギにおける LEC2 様遺伝子の発現解析．第 16 回穂発芽研究会，女満別，
1 月 26 日− 27 日，
2012．(Rikiishi,
K.: Expression analysis of LEC2 like gene in wheat. The 16th meeting of a Society of Pre-Harvest Sprouting.
January 26-27, 2012, Memanbetsu)⑵ 力石和英・吉村康弘：国際穂発芽シンポジウム報告．第 16 回穂発芽研究会，女満別，
1 月 26 日− 27 日，
2012．(Rikiishi,thK. and Yoshimura, Y. Report of the 12 International Symposium on Pre-Harvest Sprouting in Cereals. The 16th
meeting of a Society of Pre-Harvest Sprouting. January 26-27, 2012, Memanbetsu)⑶ 氷見英子：種子色と種子休眠性の関連性〜オオムギの ant 突然変異体を利用して〜．第 16 回穂発芽研究会，女満別，
1 月 26-27 日，2012．(Himi, E.: Relationship between grain color and grain dormancy –using barley ant mutants -.

35

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The 16th meeting of a Society of Pre-Harvest Sprouting. January 26-27, 2012, Memanbetsu)
江崎文一・東 藍子：イネ科野生植物メリケンカルカヤの Al 耐性の解析と、SAMS 及び ABC transporter 両遺伝子の耐性との関連について . 日本植物生理学会年会 , 京都 , 3 月 16-18 日 , 2012. (Ezaki, B., and Higashi, A.:
Characterization of Al tolerance in Andropogon virginicus L. and functional evaluation of SAMS gene and ABC
transporter like gene in Al stress. Annual Meeting of the Japanese Society of Plant Physiologists, March 16-18,
2012, Kyoto)
河野貴文・江崎文一：アラビドプシス AtGST11 遺伝子の発現・応答に関わる 4 つの転写調節因子の解析 . 日
本植物生理学会年会 , 京都 , 3 月 16‐18 日 , 2012. (Kouno, T. and Ezaki, B.: Isolation and characterization oftranscription factors involved in gene-response mechanisms in Arabidopsis thaliana AtGST11 gene. Annual
Meeting of the Japanese Society of Plant Physiologists, March 16-18, 2012, Kyoto）
Sasano, S., Shibasaka, M., Utsugi, S. and Katsuhara, M.: Molecular basis of water transport in Barley : The 3rd Type of
PIP Aquaporins. 第 53 回日本植物生理学会年会 , 京都産業大学 , 3 月 16 − 18 日 , 2012 (Sasano, S., Shibasaka,
M., Utsugi, S. and Katsuhara, M.: Molecular basis of water transport in Barley : The 3rd Type of PIP Aquaporins.
Annual Meeting of the Japanese Society of Plant Physiologists, March 16-18, 2012, Kyoto.)
氷見英子・前川雅彦：コムギのフラボノイド系色素合成に関与する anthocyanidin synthase (ANS) 遺伝子について．
第 121 回日本育種学会講演会，宇都宮，3 月 29-30 日，2012．(Himi, E. and Maekawa, M.: Characterization ofanthocyanidin synthase (ANS) gene related with flavonoid biosynthesis in wheat. 121st Meeting of the JapaneseSociety of Breeding. March 29-30, 2012, Utsunomiya)
Gichuhi, E.・氷見英子・前川雅彦：Characterization and genotyping of LIA rice line derived from the cross between
MwM, an African wild species and T-65．第 121 回日本育種学会講演会，宇都宮，3 月 29-30 日，2012．
前川雅彦・吉田明希子・Ruihong, C.・安野奈緒子・経塚淳子：機能未知遺伝子 TAW1 への nDart1 挿入系統における収量増加．第 121 回日本育種学会講演会，宇都宮，3 月 29-30 日，2012．(Maekawa, M., Yoshida A., Ruihong
C., Yasuno N. and Kyozuka J.: Increase yield in NIL carrying nDart1-inserted TAW1 with unknown function. 121st
Meeting of the Japanese Society of Breeding. March 29-30, 2012, Utsunomiya)
氷見英子：コムギの種子色に関与する遺伝子群の単離と解析．第 109 回一般社団法人日本女子大学教育文化振興
桜楓会総会，東京，6 月 16 日，2012．(Himi, E.: Characterization of genes involving in wheat grain color. 109th
Meeting of the Ofu-Kai for the Promotion of Education and Culture at Japan Women's University. June 16, 2012,
Tokyo)
江崎文一・東 藍子・Kottapalli, J.: イネ科野生植物メリケンカルカヤの高 Al 耐性機構の解析 . 日本土壌肥料学会
年会 , 鳥取 , 9 月 4‐7 日 , 2012.（Ezaki, B., Higashi, A. and Kottapalli, J.: Al tolerance mechanisms in a poaceae
wild plant, Andropogon. Annual Meeting of the Japanese Society of Soil Science and Plant Nutrition, September
4-7, 2012, Tottori）
氷見英子・武田真・前川雅彦：オオムギのプロアントシアニジン欠失突然変異体 (ant 突然変異体 ) を利用した種
子色が種子休眠に及ぼす影響について．第 122 回日本育種学会講演会，京都，9 月 14-15 日，2012．(Himi,
E., Takata, S. and Maekawa, M.: Influence of the grain color on grain dormancy in barley proanthocyanidin-freemutants (ant mutants). 122nd Meeting of the Japanese Society of Breeding. September 14-15, 2012, Kyoto)
Gichuhi, E., Himi, E., Takahashi, H. and Maekawa, M.: Identification of QTLs underlying important agronomic traits for
low input adaptability in LIA-1, derived from a cross between Oryza longistaminata and T-65. 第 122 回日本育種学会講演会，京都，9 月 14-15 日，2012．
西村秀希・氷見英子・飯田滋・栂根一夫・前川雅彦：コシヒカリ nDart1-0 タグラインの育成．第 122 回日本育種 学 会 講 演 会， 京 都，9 月 14-15 日，2012．(Nishimura, H., Himi, E., Iida, S., Tsugane, K. and Maekawa, M.:
Development of nDart1-0 line in Koshihikari. 122nd Meeting of the Japanese Society of Breeding. September 1415, 2012, Kyoto)栂根一夫・殷彰顥・高木恭子・栂根美佳・飯田滋・前川雅彦：イネ内在性 DNA トランスポゾン nDart のエピジェ
ネティックな転移活性の制御．第 122 回日本育種学会講演会，京都，9 月 14-15 日，2012．(Tsugane K., Eun C.,
Takagi K., Tsugane M., Iida S. and Maekawa, M.: IActivation and epigenetic regulation of DNA transposon nDart1
in rice. 122nd Meeting of the Japanese Society of Breeding. September 14-15, 2012, Kyoto)
Gichuhi, E.: QTL analysis for important characters in LIA rice and utilization of LIA rice characters in Basmati rice.
IPSR-Kenya Day, Kurashiki, Oct. 19, 2012.
Himi, E.: Influence of the grain color on grain dormancy in wheat and barley. IPSR-Kenya Day, October 19, 2012,
Kurashiki
西村 秀希・氷見 英子：植物研で始めるマイクロアレイ 〜依頼から解析まで〜．Agilent マイクロアレイ基盤の整36

⒆備とマイクロアレイ実験の展望（２），倉敷，11 月 30 日，2012．(Nishimura, H., and Himi, E.: How to start a
microarray analysis in the IPSR. -from application to analysis- Development of Agilent microarray system and viewof the micro array experiments. November 30, 2012, Kurashiki)
江崎文一・東 藍子・高橋憲公・西内 巧・Kottapalli, J.: イネ科メリケンカルカヤの Al 耐性機構と耐性関連の
SAMS、ABC-transporter 遺伝子の解析 土壌肥料学会関西土壌肥料支部会及び協議会 , 倉敷 , 12 月 6 − 7 日 ,2012.（Ezaki, B., Higashi, A., Takahashi, K., Nishiuchi, T. and Kottapalli, J.: Tolerance mechanisms and functional
evaluation of SAMS gene and ABC transporter gene for Al stress in Andropogon, December 6-8, 2012, Kurashiki,）37

研究所員が主催したシンポジウム等（List of Symposium Superintended by the Member of Institute）
International Plant and Animal Genome XIX
Barley Workshop
January 14, 2012
Town & Country Hotel, San Diego, USA
Organizers: Alan H. Schulman (MTT & University of Helsinki), Kazuhiro Sato (Okayama University)
1. A physical map of the barley genome - hub for gene isolation, genome diversity analysis and genome sequencing
Nils Stein (Leibniz Institute of Plant Genetics and Crop Plant Research (IPK); I.B.S.C. International Barley
Sequencing Consortium)
2. Sequences of 14,600 Gene-Bearing Minimal Tiling Path BACs of Morex Barley
Stefano Lonardi (University of California – Riverside)
3. Frequency and pattern of structural variation in the cultivated and non-cultivated gene-pool of barley as revealed byComparative Genomic Hybridization
Maria Munoz-Amatriain (University of Minnesota)
4. Genome-wide transcript profiling of barley rar3 in response to powdery mildew
Roger Wise (USDA-ARS / Iowa State University)
5. Cell-wall based host-and nonhost resistance of barley against powdery mildew
Dimitar Douchkov (Leibniz Inst. of Plant Genetics and Crop Plant Res)
6. Identification of grain dormancy Qsd1 from wild barley
Kazuhiro Sato (Okayama University)

共同利用／共同研究拠点ワークショップ−オオムギリソース整備の方向性−
日程：平成 24 年 1 月 31 日
場所：岡山大学資源植物科学研究所
オーガナイザー：佐藤和広（岡山大・植物研）
1. 生物研のムギ類プロジェクトについて
小松田 隆夫（農業生物資源研究所）
2. 農研機構のムギ類プロジェクトについて
柳沢 貴司（作物研究所）
3. コムギ研究とオオムギ研究の共通リソース
宅見 薫雄（神戸大学農学部）
4. オオムギ研究とリソース整備の方向性
佐藤 和広（岡山大学資源植物科学研究所）

Workshop supported by Joint Usage/Research Center‒ Direction of resource maintenance in barley ‒January 31, 2012
IPSR, Okayama University
Organizer: Kazuhiro Sato (IPSR, Okayama University)
1. Triticeae projects at National Institute of Agrobiological Sciences (NIAS)
T. Komatsuda (NIAS)
2. Triticeae projects at National Agriculture and Food Research Organization (NARO)
T. Yanagisawa (Institute of Crop Science, NARO)

38

3. Joint resources between wheat research and barley research
S. Takumi (Faculty of Agriculture, Kobe University）
4. Barley research and the direction of resource maintenance
K. Sato (Institute of Plant Science and Resources, Okayama University)

Workshop supported by Joint Usage/Research Center‒ Jasmonate signaling and plant defense against insect herbivores ‒February 24, 2012
IPSR, Okayama University
Organizers: Ivan Galis (IPSR, Okayama University)
1. Herbivore-induced plant volatiles drive ecological interaction networks
Junji Takabayashi (Kyoto Univ.)
2. Genetic engineering and ecology of indirect plant defenses
Gen-Ichiro Arimura (Kyoto Univ.)
3. Interaction among lima beans, spider mites and predatory mites via plant volatiles
Rika Ozawa (Kyoto Univ.)
4. Transcriptional regulation of defense against herbivores in wild tobacco species Nicotiana attenuata
Ivan Galis (IPSR, Okayama Univ.)
5. Jasmonate-induced nicotine biosynthesis in tobacco
Tsubasa Shoji (NAIST)6. Jasmonoyl isoleucine as a mobile signal to induce systemic wound response in tobacco and tomato
Hideyuki Matsuura (Hokkaido Univ.)
7. Plant-plant interaction mediated by ecological volatiles
Kenji Matsui (Yamaguchi Univ.)
8. Final remarks, discussion

共同利用／共同研究拠点ワークショップ−東日本大震災被災農地の修復に向けて−
日程：平成 24 年 2 月 27 日
場所：岡山大学資源植物科学研究所
オーガナイザー：山本洋子（岡山大・植物研）
１．放射能による環境汚染とその影響
小野 俊朗（岡山大学自然生命科学研究支援センター）
２．3.11 東日本大震災による宮城県農業の被災状況と復興支援対策
永野 邦明（宮城県北部地方振興事務所農業振興部）
３．福島県における東日本大震災の農業への影響と地域農業復旧・復興支援の取組み
太田 弘志（福島県相双農林事務所）
４．大津波に被災した農地土壌（宮城県）の概況
南條 正巳（東北大学大学院）
５．植物のセシウム吸収特性と輸送体の探索
山上 睦（（財）環境科学技術研究所）
６．オオムギを用いた塩水害の克服
佐藤 和広（岡山大学資源植物科学研究所）
７．福島県飯舘村における現地予備調査報告と今後の計画
山下 純（岡山大学資源植物科学研究所）

39

Workshop supported by Joint Usage/Research Center‒ Towards recovery of suﬀered farmland from the Tohoku Earthquake ‒February 27, 2012
IPSR, Okayama University
Organizer: Yoko Yamamoto (IPSR, Okayama University)
1. Environmental pollution and effects of radioactivity
T. Ono (Advanced Science Research Center, Okayama University)
2. Damage situation of agriculture by 3.11 Tohoku Earthquake in Miyagi prefecture and reconstruction support
K. Nagano (Miayagi Prefectural Government)
3. Effects on the agriculture in Fukushima prefecture by the Tohoku Earthquake and projects to support recovery andrebuilding the regional agriculture
H. Ohta (Fukushima Prefectural Government）
4. The general situation of farmlands suffered by big Tsunami in Miyagi prefecture
M. Nansho (Graduate School of Agriculture, Tohoku Univestiy)
5. Caesium absorption feature and search for its transporters in plants
M. Yamagami (Institute for Environmental Science）
6. Overcoming salt water damage by barley
K. Sato (Institute of Plant Science and Resources, Okayama University)
7. Report of preliminary observation at Iitate-Fukuishima and future plans
J. Yamashita (Institute of Plant Science and Resources, Okayama University)

共同利用／共同研究拠点ワークショップ− Agilent マイクロアレイ基盤の整備とマイクロアレイ実験の展望−
日程：平成 24 年 3 月 1 日
場所：岡山大学資源植物科学研究所
オーガナイザー：最相大輔（岡山大・植物研）
１．eArray を使用したカスタムアレイ作成方法のご紹介
津本 祐子（アジレント・テクノロジー株式会社）
２．カスタムアレイの設計と解析に必用な情報基盤−プローブアノテーションとデータベースの統合−
持田 恵一（理化学研究所）
３．より信頼性の高いアレイデータを得るためのアプローチ−サンプリングからデータ解析までのポイント−
長村 吉晃（農業生物資源研究所）
４．Laser microdissection を利用した組織特異的なマイクロアレイ解析
高橋 宏和（名古屋大学）
５．マイクロアレイデータ解析ソフト GeneSpring GX：数万遺伝子からのデータ発掘
高木 有希（トミーデジタルバイオロジー株式会社）
６．総合討論Workshop supported by Joint Usage/Research Center‒ Development of Agilent microarray infrastructure and the prospectsof microarray experiments ‒March 1, 2012,
IPSR, Okayama University
Organizer: Daisuke Saisho (IPSR, Okayama University)40

1. Introduction of how to create a custom array using eArray platformY. Tsumoto (Agilent Technologies)
2. Information infrastructure for the design and analysis of custom arrays- Probe annotation and database integration K. Mochida (RIKEN)
3. Approach for obtaining more reliable microarray data- From sampling to data analysis Y. Nagamura (NIAS)
4. Tissue-specific microarray analysis using the Laser microdissection
H. Takahashi (Nagoya Univ.)
5. Introduction of microarray data analysis software GeneSpring GX: Exploration from the several tens of thousand genes:
Y. Takagi (TOMY DIGITAL BIOLOGY CO.,LTD.)
6. General Discussion

共同利用／共同研究拠点シンポジウム

第４回植物ストレス科学研究シンポジウム
日程：平成 24 年３月８日〜９日
場所：倉敷市芸文館
オーガナイザー：馬 建鋒・鈴木信弘・坂本 亘・（岡山大・植物研）
３月８日【植物ストレス・遺伝資源講演】
１．イネ遺伝子発現データベース RiceXPro 構築とその利用
長村 吉晃（農業生物資源研究所）
２．シロイヌナズナのエピジェネティック変異体と遺伝子内ヘテロクロマチン制御
佐瀬 英俊（沖縄科学技術大学院大学）
３．植物の動原体解析と人工染色体
長岐 清孝（岡山大学資源植物科学研究所）
４．色素体包膜でのピルビン酸の輸送分子機構
古本 強（広島大学）
５．植物特有のアニオン輸送体 ALMT の多彩な機能
佐々木 孝行（岡山大学資源植物科学研究所）
６．ストレス応答における植物ホルモンネットワーク
仲下 英雄（東京農業大学）
７．New insights into regulation of jasmonate-mediated defense responses against herbivores in tobacco plants.
Ivan Galis（岡山大学資源植物科学研究所）
８．色素体内在物質についての細胞学的研究 [DNA と Starch を例に ]松島 良（岡山大学資源植物科学研究所）
３月９日【共同研究発表】
９．プロテオミクスによるミネラル欠乏に応答した輸送体の機能解析
深尾 陽一郎（奈良先端科学技術大学院大学）
10．窒素欠乏条件下で働くミヤコグサ根粒の MATE 型輸送体の生理機能矢崎 一史（京都大学）
11．葉緑体の遺伝子組換え技術を利用したストレス耐性植物の育成
寺地 徹（京都産業大学）
12．ツツジ科植物の無葉緑化と菌根共生
上中 弘典（鳥取大学）
13．リン欠乏で誘導される有機酸分泌に関わるトランスポーター
和崎 淳（広島大学）
14．シロイヌナズナにおけるトバモウィルス病徴決定因子の単離と解析
西口 正通（愛媛大学）

41

15．オオムギの各種いもち病菌抵抗性に関与する遺伝子座 Rmo2 の解析
玄 康洙（神戸大学）
16．光周期依存型の応答性制御における概日時計の役割
溝口 剛（筑波大学）
17．網羅的解析で明らかになった、ミトコンドリアと植物ホルモンの関係
中川 直樹（広島大学）
18．環境微生物に対するイネ変異系統の選抜
高原 浩之（石川県立大学）
19．オオムギ硝酸トランスポーター研究の新たな展開
末吉 邦（新潟大学）

Symposium supported by Joint Usage/Research Center

Forth Symposium on Plant Stress Science Research
March 8-9, 2012
Kurashiki Geibunkan
Organizer: Jian Feng Ma, Nubuhiro Suzuki, Wataru Sakamoto (IPSR, Okayama University)
March 8【Plant Stress・Genetic Resources】
1. Construction and application of RiceXPro, a database of rice gene expression
Y. Nagamura (National Institute of Agrobiological Sciences)
2. Intragenic heterochromatin controls and epigenetic mutants in Arabidopsis.
H.Saze (Okinawa Institute of Science and Technology Graduate University)
3. Analyses of plant centromeres and artificial chromosomes.
K. Nagaki (IPSR, Okayama University)
4. Molecular insights in pyruvate transport across plastid envelope membrane
T. Furumoto (Hiroshima University)
5. Functional diversity of plant specific ALMT-type anion transporter.
T. Sasaki (IPSR, Okayama University)
6. Plant hormone network in response to stress
H. Nakashita (Tokyo Agricultural University)
7. New insights into regulation of jasmonate-mediated defense responses against herbivores in tobacco plants.
I. Galis (IPSR, Okayama University)
8. Molecular mechanism to regulate substances in the plant organelles (Examples of organellar DNA and starch)
R. Matsushima (IPSR, Okayama University)
March 9
【Jointed Research】
9. Proteomic analysis of the function of transporters responding to mineral deficiencies
Y. Fukao (Nara Institute of Science and Technology)
10. Physiological role of a MATE transporter in the nodules of Lotus japonicus under N-deficient condition
K. Yazaki (Kyoto University)
11. Chloroplast transformation technology and its practical use for generating stress-resitant plants
Toru Terachi (Kyoto Sangyo University)
12. Symbiosis of Mycorrhizae with the achlorophyllous monotropoid plant in Ericaceae
H. Kaminaka (Tottori University)
13. Analyses for phosphate-deficiency inducible transporters involved in organic acid exudation
J. Wasaki (Hiroshima Univ.)
14. Identification of host factors determining the symptoms induced by tobamoviruses in Arabidopsis thaliana
M. Nishiguchi (Ehime University)42

15. Analysis of Rmo2, a core locus conditioning the resistance of barley to various host-specific subgroups of MagnaportheoryzaeGang-Su Hyon（Graduate School of Agricultural Sciences, Kobe University）
16. Function of the circadian clock in the regulation of the photoperiod-dependent responses of plant.
T. Mizoguchi (Tsukuba University)
17. Unique interactions between mitochondria and plant hormone actions highlighted by comprehensive transcripts
analyses.
H. Nakagawa (Hiroshima University)
18. Screening of rice transposon-tagged lines showing specific interaction to environmental microbes.
H. Takahara (Fac. Biores. Env. Sci., Ishikawa Prefectural University)
19. New aspect of nitrate transporter research in barley
K. Sueyoshi (Niigata University)

平成 24 年度岡山大学資源植物科学研究所公開講座プログラム
日程：平成 24 年 5 月 26 日
場所：岡山大学資源植物科学研究所
講座名：ウイルス −摩訶不思議な不完全生命体−
１．ウイルスの植物乗っ取り戦略：病原ウイルスはどのようにして植物の中を広がるか？
植木 尚子（岡山大学資源生物科学研究所）
２．ウイルスいろいろ：役に立つウイルス、目立たないウイルス鈴木 信弘（岡山大学資源植物科学研究所）

Program of IPSR Open Lectures, Okayama University 2012
May 28, 2012, IPSR
Title: Virus -Mysterious Incomplete Creature1. Strategy of pirates: How pathogenic virus spread all over host plant?
S. Ueki (IPSR, Okayama University)
2. Diverse viruses: beneficial and cryptic ones.
N. Suzuki (IPSR, Okayama University)

International Seminar on the Development of Insecticide Resistanceand Its Management in the Diamondback Moth
August 27, 2012
Nagoya University
Organizers: Tadashi Miyata (Nagoya University), Toshiharu Tanaka (Nagoya University), Ken Miura (Nagoya University),
Shoji Sonoda (IPSR, Okayama University), Chieka Minakuchi (Nagoya University)
1. Current situation of insecticide resistance in the diamondback moth in Thailand
Suprada, S. and Somsak, S. (Pest Management Group, Office of Plant Protection Research and Development,
Department of Agriculture, Thailand)
2. The insecticide efficacy to field population of the diamondback moth in Thailand
Somsak, S. et al. (Pest Management Group, Office of Plant Protection Research and Development, Department ofAgriculture, Thailand)
3. The status and management of DBM resistance to insecticides in China
Gao, X.-W. (China Agricultural University, China)43

4. Genetic background evaluation: Sharp decline of insecticide resistance under heat stress in insecticide-resistant and–susceptible Plutella xylostella
Zhang, L.-J. et al. (Fujian Agriculture and Forestry University, China)
5. Organophosphate resistance in the laboratory and field strains of the diamondback moth
Sonoda, S. (IPSR, Okayama University, Japan)
6. IPM for DBM –key tactical strategies for managing resistance in crucifer crop systems
Sivapragasam, A. et al. (CAB-SEA, Malaysia)
7. Preventing, Delaying, and Managing Resistance of Diamondback Moth: A Global Effort to Preserve Diamide Chemistry by
the International Insecticide Resistance Action Committee (IRAC)
Andaloro, J. T. et al. (DuPont Company, USA)8. Management of the development of insecticide resistance in the diamondback moth based on mechanism of insecticide
resistance.
Miyata, T. et al. (Nagoya University, Japan)

共同利用／共同研究拠点ワークショップ−植物ホルモンとイオン輸送体の相互理解−
日程：平成 24 年 8 月 31 日
場所：岡山大学資源植物科学研究所
オーガナイザー：森 泉・佐々木孝行（岡山大・植物研）
１．コムギ無細胞系を基盤とした膜タンパク質解析系の構築
野澤 彰（愛媛大学・無細胞生命科学工学研究センター）２．難利用性リンの積極的獲得に関わる根分泌物質の輸送と制御
和崎 淳（広島大学・大学院生物圏科学研究科）
３．ミヤコグサ根粒内で機能する膜輸送体
高梨 功次郎（京都大学・生存圏研究所）
４．局在と輸送の解明に向けた植物ホルモンの高感度一斉分析
軸丸 祐介（帝京大学・理工学部）
５．コムギ種子のホルモノーム
松浦 恭和（岡山大学・資源植物科学研究所）
６．伸長生長における細胞膜プロトンポンプの活性制御
高橋 宏二（名古屋大学・理学研究科）
７．孔辺細胞における原形質膜イオンチャネルの活性制御機構
宗正 晋太郎（岡山大学・大学院環境生命科学研究科）

Workshop supported by Joint Usage/Research Center‒ An Interactive Approach to Understanding Plant Hormones and Ion Transporters ‒August 31, 2012
IPSR, Okayama University
Organizers: Izumi C. Mori, Takayuki Sasaki (IPSR, Okayama University)
1. Wheat cell-free synthesis of membrane proteins for functional analysis
A. Nozawa (Cell-free Science and Technology Research Center, Ehime University)
2. Transport and regulation of root exudates involved in active uptake of sparingly available P
J. Wasaki (Graduate School of Biosphere Science, Hiroshima University)
3. Membrane transporters in nodules of Lotus japonicas
K. Takanashi (Research Institute for Sustainable Humanosphere, Kyoto University)
4. Comprehensive high-sensitivity analysis of plant hormones
Y. Zikumaru (Department of Biosciences, Teikyo University)44

5. Homonome of wheat seeds
T. Matsuura (Institute of Plant Science and Resources , Okayama University)
6. Regulation of plasma membrane proton pump activity in elongation
K. Takahashi (Graduate School of Science, Nagoya University)
7. Mechanism of plasma membrane ion channel regulation in guard cells
S. Munemasa (Graduate School of Environmental and Life Science, Okayama University)

日本育種学会 2012 年秋季大会ワークショップ
日程：平成 24 年 9 月 14 日
場所：京都産業大学
テーマ：育種学教育の現状と展望
オーガナイザー：佐藤和広（岡山大・植物研）・福井希一（阪大院工）１．育種学教育における教科書について
鵜飼 保雄（元東京大院農）２．『植物育種学各論』からの課題と提案
日向 康吉（東北大）
３．『育種における細胞遺伝学』からの課題と提案
辻本 壽（鳥取大・乾燥地研）
４．『植物の遺伝と育種』からの課題と提案
向井 康比己（大阪教育大）５．『植物の分子育種学』からの課題と提案」
鈴木 正彦（前北大農院）
パネルディスカッション 司会：福井希一・佐藤和広

Workshop of 2012 Autumn Meeting, Japanese Society of Breeding
September 14, 2012, Kyoto Sangyo University
Current status and prospects for education in breeding science
Organizers: Kazuhiro Sato (Okayama University), Kiichi Fukui (Osaka University)
1. Textbook in the education of plant breeding
Y. Ukai (University of Tokyo)
2. Proposal from my experience in editing a book "Shokubutsu-Ikushugaku-Kakuron"
K. Hinata (Tohoku University)
3. Role of cytogenetics for plant breeding
H. Tsujimoto (Arid Research Center, Tottori University)
4. Problems and proposal from "Plant Genetics and Breeding"Y. Mukai (Osaka Kyoiku University)
5. Proposal from 'Plant Molecular Breeding'
M. Suzuki (Hokkaido University)
Panel Discussion: Chairpersons : Kazuhiro Sato (Okayama University), Kiichi Fukui (Osaka University)45

日本育種学会第 54 回シンポジウム
日程：平成 24 年 9 月 14 日
場所：京都産業大学
テーマ：エピミュータジェネシスと次世代育種への展開
オーガナイザー：前川雅彦（岡山大・植物研）
・金澤章（北大・院農）・堤伸浩（東大・農学生命科学）
１．RdDM を利用した FWA 遺伝子のエピジェネティックな不活化と New Plant Breeding Techniques への応用
木下 哲（奈良先端科学技術大学院大学バイオサイエンス研究科）
２．エピゲノム操作の作物育種への応用
土生 芳樹（農業生物資源研究所）
３．エピジェネティックな遺伝子発現制御を介した形質改変
金澤 章・河西 めぐみ（北大・院農）４．オミクス解析で明らかとなってきた種内雑種特異的な遺伝子発現制御
柴 博史 1・日野沙由理 2・桂 奈津美 2・五十嵐香理 3・藤橋 大祐 3・堀内 映実 4・鈴木 穣 4・矢野健太郎 4・
磯貝 彰 2・高山 誠司 2（1 茨城大学理学部 , 2 奈良先端科学技術大学院大学バイオサイエンス研究科 , 3 明治大学農学部 , 4 東京大学新領域創成科学研究科）
５．新しい植物デザイン技術と植物育種への利用
江面 浩（筑波大学）

The 54th Symposium of the Japanese Society of Breeding
September 14, 2012, Kyoto Sangyo University
Epimutagenesis and its application for next generation breeding
Organizers: Masahiko Maekawa (IPSR, Okatama Univ.), Akira Kanazawa (Grad. Sch. Agr., Hokkaido Univ.), Nobuhiro
Tsutsumi (Grad. Sch Agr. Life Sci., Univ. Tokyo)
1. Re-silencing of FWA by RdDM and possible application to NBT
T. Kinoshita (Nara Inst. Sci Tec.)
2. Manipulation of epigenome for crop breeding
Y. Habu (NIAS)
3. Engineering novel traits via epigenetic control for gene expression
A. Kanazawa and M. Kasai (Hokkaido Univ.)
4. Whole genome analysis for identification of gene expression changes in two Arabidopsis ecotypes and their reciprocal hybrids
H. Shiba (Ibaraki Univ.) et al.
5. New plant design techniques and its application in plant breeding
H. Ezura (Univ. Tsukuba)

植物生体膜シンポジウム
日程：平成 24 年 9 月 15 日
場所：兵庫県立大学姫路書写キャンパス
テーマ：植物細胞におけるカルシウムシグナリング
オーガナイザー：森 泉（岡大・植物研）、村田芳行（岡大・環境生命科学）、且原真木（岡大・植物研）
１．光応答とカルシウムシグナル
原田 明子（大阪医科大学生物学教室）
２．気孔閉口運動を制御するカルシウムシグナリング
宗正 晋太郎（岡山大学大学院環境生命科学研究科）
３．機械刺激とカルシウムシグナル
金子 智之（岡山大学大学院医歯薬学総合研究科）

46

４．植物細胞におけるカルシウムシグナリング
菊山 宗弘（新潟大学理学部）―研究材料としてのシャジクモ類―

The Symposium of Plant Biomembranes
September 15, 2012
University of Hyogo, Himeji Shosha Campus
Theme: Calcium Signaling in Plants
Organizers: Izumi Mori (IPSR, Okayama Univ.), Yoshiyuki Murata (Env. Life Sci., Okayama Univ.)
Maki Katsuhara (IPSR, Okayama Univ.)
1. Light response and calcium signaling
A. Harada (Osaka Medical College)
2. Calcium signaling that regulates stomatal movements
S. Munemasa (Okayama University)
3. Mechanical stimulation and calcium signaling
T. Kaneko (Okayama University)
4. Calcium signaling in plants - Characean cells as an experimental model M. Kikuyama (Niigata University)

共同利用／共同研究拠点ワークショップ‒ Agilent マイクロアレイ基盤の整備とマイクロアレイ実験の展望 (2) ‒日程 : 平成 24 年 11 月 30 日
場所：岡山大学資源植物科学研究所
オーガナイザー：最相大輔（岡山大・植物研）
１．非モデル生物のトランスクリプトーム解析〜 RNA-seq か？マイクロアレイか？〜
坊農 秀雅（大学共同利用機関法人情報・システム研究機構）
２．NGS を使った遺伝子情報基盤の整備
片山 稔（ライフ・テクノロジーズ株式会社）
３．DNA マイクロアレイ＠ NGS 時代〜カスタムデザインの柔軟性がもたらす、NGS との共存関係〜
津本 祐子（アジレント・テクノロジー株式会社）
４．カイコのトランスクリプトーム解析
天竺桂 弘子（明治薬科大学薬学部生命創薬科学科）
５．植物研で始めるマイクロアレイ〜依頼から解析まで〜
西村 秀希（岡山大学資源植物科学研究所）
６．総合討論Workshop supported by Joint Usage/Research Center‒ Development of Agilent microarray infrastructure and the prospectsof microarray experiments (2) ‒November 30, 2012
IPSR, Okayama University
Organizer: Daisuke Saisho (IPSR, Okayama University)
1. Transcriptome analysis of non-model organisms: RNA-seq or microarray?
H. Bono (DBCLS)

47

2. Development of genetic information infrastructure using NGS
J. Katayama (life technologies)
3. DNA microarray@ NGS era: Flexibility of custom-designed DNA microarray and Relationship between the microarray and
NGS
Y. Tsumoto (Agilent technologies)
4. Transcriptome analysis of silkworm
H. Tabunoki (Meiji Pharmaceutical Univ.)
5. DNA microarray inflastructure in IPSR: From request to analysis
H. Nishimura (IPSR, Okayama Univ.)
6. General Discussion

48

共同研究リスト（共同利用・共同研究拠点事業）（List of Joint Projects at the Joint Usage/ Research Center）
研究所教員名（Corresponding staff）

所属機関・部局（Institution, Department）

職

名（Position）

氏 名（Name）

課題名（Subject title）
九州大学・理学研究院生物科学部門（Kyushu University, Faculty of Sciences,
Department of Biology）

特任教授（Specially Appointed
Professor）

和田 正三（Wada, M.）

色素体の分化と光ストレス回避のための運動・定位の関係（Relationship of plastid differentiation with the movement and positioning for an escape from lightstress）
島根大学・生物資源科学部（Shimane University, Faculty of Life andEnvironmental Science）

教授（Professor）

シロイヌナズナ APX 変異体を用いたレドックスシグナル伝達機構の解析
坂本亘（Analysisof redox signal transduction using Arabidoposis APX mutant）（Sakamoto, W.）
大阪大学・大学院理学研究科
准教授（Osaka University, Graduate School of Science） （Associate Professor）

石川 孝博（Ishikawa, T.）高木 慎吾（Takagi, S.）

ミトコンドリア・葉緑体共局在の生理学的意義の解明（Co-localization of mitochondria and chloroplasts and its physiological relevance to stresses in
Arabidopsis mesophyll cells）
京都産業大学・総合生命科学部（Kyoto Sangyo University, Faculty of Life Science）

教授（Professor）

寺地
徹（Terachi, T.）

葉緑体の遺伝子組換え技術を利用したストレス耐性植物の育成（Chloroplast transformation technology and its practical use for generating stress-resitant plants）
鳥取大学・農学部
准教授
上中 弘典
坂本
亘・
（Tottori University, Faculty of Life Science）（Associate Professor） （Kaminaka, H.）
松島
良（Sakamoto, W. and 菌根菌共生及び無葉緑植物における共生関連因子とストレス応答
Matsushima, R.） （Factors and stress responses associated with symbiosis of Mycorrhizae with the achlorophyllous
monotropoid plant）
北海道大学・大学院水産科学研究院（Graduate School of Fisheries Sciences, Hokkaido
University）

准教授（Associate Professor）

三上 浩司（Mikami, K.）

海藻における環境ストレス下での植物ホルモンの定量解析（Plant hormone responses of seaweeds under environemtal stress conditions）
北海道大学・大学院理学研究院（Hokkaido University, Fucalty of Science）

助教（Assistant Professor）

佐藤 長緒（Sato, T.）

植物の栄養素シグナル制御におけるアブシジン酸の機能解明（Studies on Plant Nutrient Signaling Regulated by Abscisic Acid）
平山 隆志（Hirayama, T.）

静岡県立大学・生活健康科学研究科（University of Shizuoka, Graduate School of
Nutritional and Environmental Sciences）

助教（Assistant Professor）

丹羽 康夫（Niwa, Y.）

准教授（Associate Professor）

丸山 明子（Maruyama, A.）

植物の pH ストレス応答に関する研究（Research on pH stress response in plant）
九州大学・大学院農学研究院（Kyushu University, Faculty of Agriculture）

植物 EIL 転写因子の機能分化（Functional differentiation of Plant EIL transcription factor）
岡山大学・自然科学研究科（Okayama University, Faculty of Science）

助教（Assistant Professor）

本瀬 宏康（Motose, H.）

植物の NimA 関連キナーゼのストレス応答と形態形成における機能解析（Functional analysis of NimA-related protein kinases in stress response and morphogenesis）

49

広島大学・生物圏科学研究科（Hiroshima University, Graduate School of
Biosphare Science）

助教（Assistant Professor）

中川 直樹（Nakagawa, N.）

ミトコンドリア関連変異による、環境シグナル応答修飾機構の研究
平山 隆志・（Analysis of the effects of mitochondrial dysfunction on environmental stress responses）
森泉（Hirayama, T. and
岡山大学・異分野融合先端研究コア
助教（特任）
能年 義輝
Mori, I.）
（Okayama University, Research Core for（Assistant Professor）（Noutoshi, Y.）
Interdisciplinary Sciences (RCIS)）
NahG 遺伝子の副作用の分子メカニズム解明（Characterization of molecular mechanism of NahG side effect）
大阪医科大学・医学部（Osaka Medical College, Faculty of Medicine）

森
泉（Mori, I.）

講師（Lecturer）

原田 明子（Harada, A.）

Ca2+ シグナルに着目した強光ストレス応答反応の分子機構に関する研究（Studies on Ca2+ signaling mechanisms in light stress）
国立環境研究所・生物・生態系環境研究センター（National Institute for Environmental Studies,
Center for Environmental Biology and Ecosystem
Studies）

主任研究員（Senior researcher）

玉置 雅紀（Tamaoki, M.）

大気汚染ガス（オゾン）によるイネの収量減少機構の解明（Studies on the yield reduction mechanism of rice by ozone exposure）
北海道大学・創成研究機構（Hokkaido University, Creative ResearchInstitution）

特任助教（Specially Appointed
Assistant Professor）

三輪 京子（Miwa, K.）

ホウ酸輸送体発現上昇による作物へのホウ素栄養ストレス付与（Enhanced crop B stress tolerance by increasing expression level of B transporters）
横浜市立大学・木原生物学研究所（Yokohama City University, Kihara Institute for
Biological Research）
馬建鋒
（Ma, J. F.）

教授（Professor）

坂智広（Ban, T.）

コムギ ABC トランスポーター TaMRP-D1 の機能解析（Functional analysis of wheat ABC transporter TaMRP-D1）
名古屋大学・大学院理学研究科（Nagoya University, Graduate School of Science）

教授（Professor）

木下 俊則（Kinoshita, T.）

乾燥ストレスや日長に応答した気孔孔辺細胞における遺伝子発現の解析（Analysis of gene expression in stomatal guard cells in response to drought stress and day length）
島根大学・生物資源科学部（Shimane University, Faculty of Life andEnvironmental Science）

助教（Assistant Professor）

秋廣 高志（Akihiro, T.）

ヒ素およびカドミウムの輸送に関わる新奇トランスポーターの機能解析（Functional characterization of novel arsenic and cadmium transporters）
京都大学・生存圏研究所（Kyoto University, Research Institute for
Sustainable Humanosphere）

助教（Assistant Professor）

杉山 暁史（Sugiyama, A.）

ミヤコグサ根粒内で機能する ALMT の生理的役割（Physiological roles of ALMT functioning in nodules of Lotus japonicus）
広島大学・大学院生物圏科学研究科（Hiroshima University, Graduate School of
Biosphere Science）

准教授
和崎
淳
山本 洋子・（Associate Professor）（Wazaki, J.）
佐々木 孝行（Yamamoto, Y. and リン欠乏誘導型膜輸送タンパク質の機能の解明と応用
Sasaki, T.）（Analyses and applications for transport proteins induced by phosphate-deficiency）
愛媛大学・無細胞生命科学工学研究センター（Ehime University, Cell-Free Science andTechnology Research Center and Venture BusinessLaboratory）

教授（Professor）

戸澤譲（Tozawa, Y.）

膜輸送体蛋白質の合成と機能解析（In vitro synthesis and functional analyses for the membrane transporter proteins）

50

山本 洋子・
佐々木 孝行（Yamamoto, Y. and
Sasaki, T.）
佐々木 孝行・山本 洋子（Sasaki, T. andYamamoto, Y.）

京都府立大学・大学院生命環境科学研究科（Kyoto Prefectural University, Graduate School ofLife and Environmental Sciences）

椎名隆（Shiina, T.）教授（Professor）

植物の病害・ストレス応答と葉緑体 Ca2 ＋シグナル（Biotic and abiotic stress responses in plants and chloroplast Ca2+ signaling）
岡山大学・大学院環境生命科学研究科（Graduate School of Environmental and Life
Science, Okayama University）

村田 芳行（Murata, Y.）

教授（Professor）

イオンチャネルを標的とした耐性植物の創出とその利用に関する研究（Generation of tolerant plants by engineering of ion channels）
京都府立大学・大学院生命環境科学研究科（Kyoto Prefectural University, Graduate School ofLife and Environmental Sciences）

森田 重人（Morita, S.）

講師（Lecturer）

イネのカリウム / ナトリウム輸送体 HKT と HAK の耐塩性における機能の解析（Functional analysis of potassium and sodium transporter HKTs and HAKs in rice）
信州大学・繊維学部
准教授（Shinshu University, Faculty of Textile Science and（Associate Professor）
Technology）
且原 真木（Katsuhara, M.）

堀江 智明（Horie, T.）

植物のナトリウム / カリウム透過性輸送体のイオン輸送特性の解明（Analysis of the ion transport property of sodium/potassium transporters in plants）
名古屋大学・エコトピア科学研究所（Nagoya University, EcoTopia Science Institute）

研究機関研究員（Research Associate）

古市 卓也（Furuichi, T.）

リン酸化によるクロライドチャネルの活性制御機構（Regulatory mechanisms of the chloride channel activity by phosphorylation）
京都大学・大学院人間・環境学研究科（Kyoto University, Graduate School of Humanand Environmental Studies）

准教授（Associate Professor）

瀬戸口浩彰（Setoguchi, H.）

琵琶湖の海浜植物における耐塩性喪失の検証：特に光合成特性について（Lost of salt tolerance in beach plants living around the Lake Bewa: the aspect of photosynthetic
properties）

鈴木 信弘（Suzuki, N.）

鈴木 信弘・
近藤 秀樹（Suzuki, N. andKondo, H.）
近藤 秀樹・
鈴木 信弘（Kondo, H. andSuzuki, N.）

宮城大学・食産業学部（Miyagi University, School of Food, Agriculturaland Environmental Sciences）

笠原
紳（Kasahara, S）

植物病原糸状菌 Cryphonectria parasitica の RAS シグナルトランスダクション経路とマイコウ
イルスとの関係（Exploration of interactions between infection the RAS signaling pathway of their phytopathogenic
host, Cryphonectria parasitica and mycovirus infecion）
愛媛大学・農学部（Ehime Univ., Faculty of Agriculture）

教授（Professor）

西口 正通（Nishiguchi, M.）

シロイヌナズナにおけるトバモウイルス病徴決定因子の単離と解析（Isolation and characterization of host factors responsible for symptom induction in Arabidopsis
thaliana by tobamoviruses）
東京家政大学・家政学部（Tokyo Kasei Univ., Department of Environmental
Education）

准教授（Associate Professor）

藤森 文啓（Fujimori, F.）

マイタケ Partitivirus の性状と生物学的特性に関する研究（Molecular and biological properties of a novel partitivirus from Grifola frondosa）
京都大学・大学院農学研究科（Kyoto Univ., Graduate School of Agriculture）

谷明生（Tani, A.）

准教授（Associate Professor）

教授（Professor）

阪井 康能（Sakai, Y.）

植物表層に棲息する C1 微生物の分離と植物 - 微生物間相互作用の解析（Isolation of C1 microorganisms inhabiting phyllosphere, and analysis of plant-microbe interaction）
岐阜大学・応用生物科学部
准教授（Gihu Univ.,Faculty of Applied Biological Sciences） （Associate Professor）

中川 智行（Nakagawa, T.）

レアアースによるメタノール細菌の代謝活性化機構の解明と植物生育促進技術への応用（Mechanism for metabolic activation by rare-earth elements in methylotrophic bacteria and its
application for plant growth promotion）

51

東京大学・大学院理学系研究科
助教（University of Tokyo, Graduate School of Science） （Assistant Professor）

ガリス イバン（Galis, I.）竹内 雅宜（Takeuchi, M.）

高等植物の草食性昆虫に対する防御反応系における cGMP と cAMP の機能解明（Functional analysis of cGMP and cAMP in defense of higher plants against herbivorous insects）
山口大学・大学院医学系研究科（Yamaguchi University, Graduate School of
Medicine）

松井 健二（Matsui, K.）

教授（Professor）

草食性昆虫食害特異的揮発性化合物への植物の応答機構の解明（Mechanisms of plant responses to specific volatile compounds induced by feeding of herbivorous
insects）
園田 昌司・
山下純（Sonoda, S. andYamashita, J.）植木 尚子（Ueki, S.）

秋田県果樹試験場（Fruit-Tree Experiment Station, Akita Prefectural
Agriculture, Forestry and Fisheries ResearchCenter）

主任研究員（Senior researcher）

舟山
健（Funayama, K.）

リンゴ園における植生管理と土着カブリダニの定着に関する研究（Study on vegetation management and colonization of phytoseiid mites in apple orchards）
大阪大学・蛋白質研究所
助教（Osaka University, Institute for Protein Research） （Assistant Professor）

佐藤
毅（Sato, T.）

赤潮原因藻ヘテロシグマを宿主とする DNA ウイルス増殖過程の解析（Molecular analysis of replication process of a double strand DNA virus, Heterosigma akashiwo
virus）
神戸大学・大学院農学研究科（Kobe Univ., Graduate School of Agricultural
Science）

土佐 幸雄（Tosa, Y.）

教授（Professor）

オオムギの各種いもち病菌抵抗性に関与する複合遺伝子座 Rmo2 の構造解明（Identification of structure on complex locus Rmo2 showing various resistance reactions to barley）
佐藤 和広（Sato, K.）

金沢大学・学際科学実験センター准教授（Kanazawa University, Advanced Science Research（Associate Professor）
Center）

西内
巧（Nishiuchi, T.）

シロイヌナズナで解明された赤かび病抵抗性遺伝子のオオムギへの応用展開（Advanced research in barely on Fusarium resistance gene identified in Arabidopsis）
京都大学・農学研究科
助教（Graduate School of Agriculture, Kyoto University） （Assistant Professor）

那須田周平（Nasuda, S.）

オオムギゲノミクスに立脚したコムギゲノム解析基盤の構築（Construction of basis of wheat genomic analysis based on barley genomics）
佐藤 和広・
最相 大輔（Sato, K. and
Saisho, D.）
最相 大輔・
佐藤 和広（Saisho, D. andSato, K.）

最相 大輔
（Saisho, D.）

武田
真・
佐藤 和広
（Taketa, S. andSato, K.）52

理化学研究所・植物科学研究センター（RIKEN Plant Research Center）

研究員（Researcher）

澤田 有司（Sawada, Y.）

准教授（Associate Professor）

松岡 由浩（Matsuoka, Y.）

オオムギのメタボロームの QTL 解析（QTL analysis on barley metabolome）
福井県立大学・生物資源学部（Fukui Prefectural University, The Faculty of
Biotechnology）

タルホコムギの耐塩性ナチュラルバリエーション（Natural variation for salt tolerance in Aegilops tauschii Coss）
神戸大学・大学院農学研究科（Kobe Univ., Graduate School of Agricultural
Science）

准教授（Associate Professor）

山崎 将紀（Yamasaki, M.）

オオムギ遺伝資源の表現形質の測定と管理システムの開発（Development of Phenotyping Management System in Barley Genetic Resource）
龍谷大学・文学部（Ryukoku University, Faculty of Letters）

教授（Professor）

オオムギ遺伝資源からの温度不感受変異系統の探索（Screening of temperature insensitive mutants from barley genetic resources）

古本
強（Furumoto, T.）県立広島大学・生命環境学部（Prefectural University of Hiroshima, Faculty ofLife and Environmental Sciences）
武田
真・
佐藤 和広
（Taketa, S. andSato, K.）

准教授
（Associate Professor）

福永 健二（Fukunaga, K.）

アワ PPO 遺伝子の品種間多様性とオオムギ PPO 遺伝子との比較（Varietal variation of PPO genes in foxteil millet and comparison with barley PPO genes）
三重大学・大学院生物資源学研究科（Mie Univeresity, Graduate School of Bioresources）

教授（Professor）

掛田 克行（Kakeda, K.）

オオムギ皮裸性遺伝子 (Nud) の機能と分化に関する研究（Function and differentiation of barley covered/naked caryopsis gene (Nud)）
村田
稔・
長岐 清孝
（Murata, M. andNagaki, K.）

京都大学・大学院農学研究科（Kyoto Univ., Graduate School of Agriculture）

教授（Professor）

遠藤
隆（Endo, T. R.）

コムギ属植物の効率的形質転換法の開発（Development of efficient transformation techniques in Triticinae）
大阪教育大学・教養学科（Osaka Kyoiku University, Division of Natural
Science）

教授（Professor）

向井康比己（Mukai, Y.）

ラン科植物における動原体配列の解析と人工染色体の作出（Analysis of centromeric DNA sequences and construction of artificial chromosomes in Orchids）
長岐 清孝・
村田稔（Nagaki, K. and
Murata, M.）

千葉大学・大学院園芸学研究科
助教（Chiba University, Graduate School of Horticulture） （Assistant Professor）

菊池 真司（Kikuchi, S.）

トレニア属植物の動原体構成要素の単離と人工染色体の構築（Isolation of centromeric DNAs and development of artificial chromosome in Torenia）
関西福祉科学大学・保健医療学部（Kansai University of Welfare Sciences, Departmentof Rehabilitation Sciences）

教授（Professor）

山本 真紀（Yamamoto, M.）

ネギ属植物における動原体配列の解析と人工染色体の作出（Analyses of centromeres and construction of artificial chromosomes in Allium specie）
長岐 清孝（Nagaki, K.）

基礎生物学研究所（National Institute for Basic Biology）

助教（Assistant Professor）

星野 敦（Hoshino, A.）

アサガオの遺伝子資源を用いたエピジェネティクス（Epigenetics on the bioresources of the Japanese morning glory）
石川県立大学・生物資源環境学部（Ishikawa Prefectural University, Faculty of
Bioresources and Environmental Sciences）

教授 (Professor)

鈴木 正一(Suzuki, S.)

イネ内在性トランスポゾンを用いた白未熟粒関連遺伝子の単離（Isolation of genes related to milky white kernels in rice）
石川県立大学・生物資源環境学部（Ishikawa Prefectural University, Faculty of
Bioresources and Environmental Sciences）
前川 雅彦（Maekawa, M.）

教授 (Professor)

関根 政実(Sekine, M.)

イネ内在性トランスポゾンを用いた新奇植物ホルモン関連遺伝子の単離（Isolation of a gene related to plant hormone signaling in rice）
基礎生物学研究所（National Institute for Basic Biology, TsuganeGroup）

助教 (AssistantProfessor)

栂根 一夫(Tsugane, K.)

内在性 DNA トランポゾンを用いた逆遺伝的手法による環境耐性イネの作出（Development of environmental stress- tolerant rice by reverse genetic method using endogenous
DNA transposon）
東京大学・大学院農学生命科学研究科（University of Tokyo, Graduate School of
Agricultural and Life Sciences）

教授 (Professor)

長戸 康郎(Nagato, Y.)

イネの温度ストレス感受性変異体の解析（Analysis of temperature sensitive mutants in rice）

53

前川 雅彦（Maekawa, M.）

江崎 文一（Ezaki, B.）

54

石川県立大学・生物資源環境学部（Ishikawa Prefectural University, Faculty of
Bioresources and Environmental Sciences）

准教授 (Associate
Professor)

高原 浩之(Takahara, H.)

環境微生物に対するイネ変異系統の選抜と遺伝子の同定（Screening of rice transposon-tagged lines showing specific interaction to environmental microbes）
吉備国際大学・保健福祉研究所（Kibi International University, Research Institute of
Health and Welfare）

講師 (Lecturer)

元田 弘敏(Motoda, H.)

Funaria hygrometria（ヒョウタンゴケ）の高い金属資源蓄積機構に関する研究（High accumulation mechanism of metal-resources in Funaria hygrometria）

Annual Report 2012

Director: Yoko Yamamoto
Editorial Members:

Yuko Yamashita
Sanae Rikiishi
Shoji Sonoda
Published by Institute of Plant Science and Resources, Okayama University
Chuo 2-20-1, Kurashiki 710-0046, JapanTe l : + 81-86-424-1661
Fax: + 81-86-434-1249

岡山大学資源植物科学研究所報告第 20 巻（Annual Report 2012）
平成 25 年 3 月 25 日 印刷
平成 25 年 3 月 31 日 発行
発 行

所

岡山大学資源植物科学研究所
710-0046 倉敷市中央 2 丁目 20-1
TEL：086-424-1661
FAX：086-434-1249

編集委員

山下 優子
力石 早苗
園田 昌司

印 刷 所

昭和印刷株式会社