アプリケーションノート

法医学

Agilent Captiva EMR―Lipid クリーンアップ
および LC/MS/MS を用いた毛髪中のカルボキシ-THC の測定

著者

Mariá Del Bianco Luppi
JM BioAnalises
Botucatu, SP, Brazil
Simone Nascimento andLeonardo Valentin
Agilent Technologies, Inc.
Barueri, SP, Brazil

概要

このアプリケーションノートでは、Agilent 6470A トリプル四重極 LC/MS および Agilent 6495C トリプ
ル四重極 LC/MS の 2つの LC/MS/MS モデルを比較評価します。また、複雑な毛髪マトリックスに有効なサンプル前処理メソッドをまとめ、毛髪中のカルボキシ-THC のカットオフ限度 0.2 ng/g を満たすために確認法として選択した、クリーンアップステップで Agilent Captiva EMR―Lipid を用いた最終的なメソッドを示します。

はじめに

クロマトグラフィーは、より特異性が高く、良好 な 検 出 下 限（LOD）と 定 量 下 限（LOQ）

る最 も重要 な 利点 は、誘導体化 が 不要 なこれました。毛髪検査の利点の 1 つとして、生ドの 確認 に 最適 な 測定法 です。高感度 の 免能なことです。ただし、GC/MS/MS が大麻代げられます。また、多くの薬物は毛髪中に残りる測定 は、その高 い特異性と低 い LOD およが検出された例 もあります。毛髪検査 は、犯認 に 適しています。また、高感度 の 免疫アッ性的暴行の特定、親権訴訟での薬物使用の証

マトグラフィー /質量分析（GC/MS）、ネガティ

毛髪の乱用薬物検査は 50 年以上前に導入さ体液よりも幅広 い薬物 を検出できることがあやすく、900 年前のミイラの毛髪からコカイン罪捜査、薬物使用歴の確認、薬物を悪用したが 得られることから、毛髪中 のカンナビノイ

疫アッセイおよびガスクロマトグラフィーによび LOQ により、毛髪中のカンナビノイドの確

セイ、電子 イオン化（EI）を用 いたガスクロ

LC/MS/MS メソッドを使用することで得られと、 またスクリーニングおよび確認検査 が 可謝物を検出下限において最大の信号として検出および定量できるのに対し、LC/MS/MS では、それほど明確 な信号 が得られません。これは、毛髪マトリックスが複雑であることからLC/MS/MS で最終的に生じる制約であり、その 際 にイオン抑制 が 起こっていることが 認 め

明、仮釈放者の断薬や薬物治療関係者またはブ化学イオン化（CI）を用いた GC/MS、およられています。この代謝物については、カット示、運転免許証返還時の大麻常用者かどうか（GC/MS/MS）メソッドでは、毛髪中 のカンす。表 1 に、ターゲット成分の特性を示します。

従業員のモニタリング、子宮内曝露の証拠提の判断などに用いられています。図 1 に、考えられるヒト毛髪へのカンナビノイドの取り込み経路を示します。

毛髪 の 薬物検査 は、 サンプリングが 容易で、汚染による劣化が起こりにくく、検出可能期間

びガスクロマトグラフィー /タンデム質量分析

ナビノイドに対し、SoHT で要求される濃度のオフ濃度以下でのみこの効果 が顕著になりま

1/20 から 1/100 の検出下限を達成できることが報告されています。ただし、これらのメソッドには誘導体化ステップが必要です3 ～ 10。

が長いことから、職場環境プログラムにも組み込まれています。多くの国では、職場の毛髪検査に関するガイドラインが提示されており、初期検査のカットオフ濃度を毛髪 1 mg あたりマリファナ代謝物 1 pg として定めています。
ブラジルにおいては、Society of Hair Testing（SoHT）が 規 定 する 限 度 に 従 い、11-ノル-9-カルボキシ-Δ9-テトラヒドロカンナビノール（THC-COOH）の 確認 カットオフ限度 を毛髪1 mg あたり 0.0002 ng としています2。そのため、毛髪中の薬物の検出および定量には、十分 に 高感度で特異性 の 高 い分析手順 を使用することが重要であり、これがワークフローのボトルネックにもなっています。このことは、毛髪中濃度 の低いカンナビノイドに特 に当てはまります。従来、検査法には免疫アッセイが広く使用されてきましたが、感度、選択性、およびコストが課題として残されています。

図 1. 考えられるヒト毛髪へのカンナビノイドの取り込み経路12

実験方法

表 1. ターゲット成分、log P、分子式、化学構造

機器および試薬使用した機器は次のとおりです。

•Agilent Captiva EMR―Lipid（毛髪 25 mg の処理用）

Vac Elut 20 マニホールド、16 × 100 mm 試験管用コレクション

ラック付き（p/n 12234103）

液は、プラスチック製キャップ付きのボト

注意：水酸化ナトリウムに水 を加えると熱 が発生します。
•Phenyl-Hexyl、3.0 × 150 mm、1.9 µm•

Agilent 1290 Infinity II インライン••社および LGC 社）

GC グレードの n-ヘキサンおよび酢酸エ（NaOH）および酢酸（Merck/Sigma 社）

超純水（Milli-Q により製造）

1 M の 水酸化 ナトリウム（毛髪分解溶液）：NaOH（4 g）をビーカーに計量し、水 50 mL を加えて溶解した後、溶液を100 mL メスフラスコに移しました。ビー

MeOH/水（8：2 v/v）
（Captiva EMR―
Lipid 用溶媒）：80 mL のメタノールと構造•

サンプル前処理メソッド

水、アセトン、 ジクロロメタン（DCM）を順次使用し、毛髪 サンプルをボルテックスミキサーで 1 分間撹拌して 洗浄しました。次 に、毛髪 を乾燥させ、細断しました。その後、1）

毛髪の分解とプレクリーンアップ、2）液液抽出（LLE）、3）Captiva EMR―Lipid によるク

リーンアップ、4）LC/MS/MS への注入、の 4段階でサンプル前処理を行いました。

1.毛髪の分解40 mg の陰性の毛髪をヘッドスペースバイア

ルに計量しました。静電気による毛髪のバイアしました。

ル壁面 への付着を防ぐため、塩水で処理した

8 ng/mL のカルボキシ-THC-d3 を含むの後、ブランク毛髪サンプルに次のようにスパ内部標準（IS）― カルボキシ-THC-d3：バイアルを使用することをおすすめします。そIS 溶液を MeOH で調製しました。これ

イクしました。

ます。

b） ダブルブランク（IS なし）。

検量線作成用標準溶液 ― カルボキシ-THC（CCS）：6 種類の濃度（0.15、0.2、0.4、0.8、1.6、および 3.2 ng/mL）

ノール （MeOH）（J.T. Baker 社）

標準および溶液の調製••

チル （EtOAc）、LC/MS グレードのメタACS グレードの水酸化ナトリウムエチルを合わせ、十分に混合しました。

は、マトリックス中濃度 8 ng/g に相当しカルボキシ-THC およびカルボキシ-THC-d3 標準試薬（それぞれ Cerilliant（9：1 v/v）（毛髪抽出用溶媒）：

20 mL の超純水を合わせ、十分に混合（p/n 823750-943）

フィルタ、0.3 µm（p/n 5067-6189）

n-ヘキサンと酢酸エチル混合液

90 mL のヘキサンと 10 mL の酢酸

Agilent InfinityLab Poroshell 120

使用した試薬は次のとおりです。

•C21H28O4

ルで保管しました。

3 × 5 mm、1.9 µm、UHPLC ガード

•

6.21

プレート（p/n 5190-1000）

Poroshell 120 Phenyl-Hexyl、•カルボキシ-THC

ラスコの 目盛りまで水 を加えました。溶（p/n 693675-312）、•

分子式処理用）および 1 mL、40 mg（p/n 5190-1002）または 96 ウェル

•

Log P

カートリッジ：3 mL、300 mg（p/n 5190-1003）（毛髪 40 mg の•名前a） ブランク – 40 µL の IS を加えました。

c） 標準溶液 1 ～ 6 – それぞれに各濃度の検量線作成用標準溶液 40 µL と IS溶液 40 µL をプレスパイクして、毛髪の検量線作成用標準溶液を MeOH で調サンプル中のカルボキシ-THC の最終品質管理（QC）溶液（カルボキシおよび 3.2 ng/g にしました。

製しました。

-THC）：バッチの品質管理には、0.2 ng/mL の溶液を使用しました。また、システムの適合性を評価するため、分析開始前に 0.04 ng/mL の溶液を注入しました。

濃度を 0.15、0.2、0.4、0.8、1.6、d） QC – 40 µL の QC 溶液と 40 µL のIS 溶液をプレスパイクして、毛髪サンプル中のカルボキシ-THC の最終濃度を0.2 ng/g にしました。

e） バッチの残りの検査対象サンプルに40 µL の IS 溶液を加えました。

カーは、少量の水で 2 ～ 3 回洗浄しました。溶液を 1 分間超音波処理し、メスフ3スパイクした毛髪サンプルを 3 分間平衡化した 後、2 mL の 1 M NaOH 溶液 を加 えました。その後、バイアルにキャップをし、100 ℃で 30 分間インキュベーションしてから、室温まで冷却しました。

次に、5 mL の n-ヘキサン/EtOAc（9：1 v/v）を 加 えました。サンプルをボルテックスミキサーで 1 分間撹拌した後、明確に相分離するために、必要に応じて 4,000 rpm で 5 分間遠心分離しました。上澄 みの有機層 は 廃棄しました。サンプルに 2 mL の酢酸を加えて混合しました。

上 記 の 手 順 の 代 わりに、25 mg の 毛 髪 とCaptiva EMR―Lipid 1 mL カートリッジを、各溶液の体積を適宜調整して使用することもできます。図 2 および図 3 に、40 mg および25 mg のサンプルを使用したメソッドのワークフローを示します。

2.液液抽出（LLE）

5 mL の n-ヘ キ サン/EtOAc （9：1 v/v）を加えました。サンプルをボルテックスミキサー

で 1 分間撹拌して、必要 に 応じて遠心分離し、上澄 みを別 のチューブに 移しました。この LLE 手順 を 2 回以上繰り返し、そのたびに上澄 みの有機層 を移して合 わせました。合わせた有機抽出液を 50 ℃の N2 流下で乾燥させました。その後、乾燥サンプルを 1.5 mLの MeOH/水（8：2 v/v）で再溶解してから、1.5 分間超音波処理し、ボルテックスミキサーで 30 秒間撹拌しました。

4

第 1 段階：分解

第 2 段階：
プレクリーンアップ

第 3 段階：LLE

第 4 段階：Captiva EMR—Lipid によるクリーンアップ

40 mg の毛髪

5 mL の 9：1 n-ヘキサン/EtAOc を追加

5 mL の 9：1n-ヘキサン/EtAOc を加え、ボルテックス
ミキサーで 1 分間撹拌

抽出液全量をCaptiva EMR—Lipid
3 mL カートリッジに移動

IS および標準溶液を追加
3 分間
平衡化
2 mL の 1 M
NaOH 溶液を追加
サンプルを
100 ℃ で 30 分間インキュベーション
室温まで冷却

ボルテックス
ミキサーで 1 分間撹拌し、有機層を廃棄
2 mL の酢酸を加え、ボルテックスミキサー
で撹拌

上澄みを別のチューブに移動
50 ℃ の N2 中で乾燥
1.5 mL の
8：2 MeOH/H2O で再溶解
ボルテックスミキサー
で 30 秒間撹拌し、1.5 分間超音波処理

2 回以上繰り返し自然落下させるか低真空で吸引し、3～5 秒/滴で溶出カートリッジ内の液体がなくなったら、1 mL の8：2 MeOH/H2O を追加充填剤が完全に乾燥するまで低真空で吸引
50 ℃ の N2 中で乾燥150 μL の MeOH で再溶解
ボルテックスミキサー
で 30 秒間撹拌し、1.5 分間超音波処理
LC/MS/MS へ注入

図 2. Agilent Captiva EMR―Lipid 3 mL カートリッジを使用した毛髪 40 mg のサンプル前処理ワークフロー

3.Captiva EMR-Lipid クリーンアップ

再 溶 解 し た サ ン プ ル 1.5 mL を Captiva

EMR―Lipid 3 mL カートリッジに 移しました。1 滴あたり 3 ～ 5 秒の流量でサンプルを自然落下させ、溶出しました。その際、必要に応じて低真空で吸引しました。カートリッジ

内 の 液体 が 見えなくなった 時点で、1 mL のMeOH/水（8：2 v/v）を 加 えて 追加溶出 を行いました。その際、必要 に応じて真空吸引しました。溶出液を 50 ℃の N2 流下で乾燥させました。その後、乾燥サンプルを 150 µL のMeOH で再溶解してから、 ボルテックスミキサーで 30 秒間撹拌し、1.5 分間超音波処理しました。LC/MS/MS に注入するため、インサートを取り付けた 2 mL バイアルにサンプルを移しました。

第 1 段階：分解

第 2 段階：
プレクリーンアップ

第 3 段階：抽出

第 4 段階：クリーンアップ

25 mg の毛髪

2 mL の 9：1 n-ヘキサン/EtAOc を追加

2 mL の 9：1
n-ヘキサン/EtAOc を加え、ボルテックスミキサーで 1 分間撹拌

抽出液全量をCaptiva EMR—Lipid
1 mL カートリッジに移動

IS および標準溶液を追加
3 分間平衡化
1 mL の 1 M NaOH
溶液を追加サンプルを
100 ℃ で30 分間インキュベーション
室温まで冷却

ボルテックスミキサーで 1 分間撹拌し、有機層を廃棄
1 mL の酢酸を加え、ボルテックスミキサー
で撹拌上澄みを別のチューブに移動
50 ℃の N2 中で乾燥
0.5 mL のMeOH/H2O で再溶解
ボルテックスミキサー
で 30 秒間撹拌し、1.5 分間超音波処理

2 回以上繰り返し低真空で吸引して3～5 秒/滴で溶出0.2 mL の 8：2
MeOH/H2O を追加充填剤が完全に乾燥するまで低真空で吸引
50 ℃の N2 中で乾燥
75 μL の MeOH で再溶解
ボルテックスミキサー
で 30 秒間撹拌し、1.5 分間超音波処理
LC/MS/MS へ注入

図 3. Agilent Captiva EMR―Lipid 1 mL カートリッジを使用した毛髪 25 mg のサンプル前処理ワークフロー5機器メソッド

サンプルの 分析 には、Agilent 1290 Infinity

II LC と、Agilent Jet Stream iFunnel エレ

クトロスプレーイオンソース 搭載 の Agilent

6495C トリプル四重極 LC/MS を連結したシステムを使用しました。表 2 および表 3 に機器の使用条件を詳しく示します。

毎 日、 サ ンプ ル の 分 析 を 開 始 す る 前 に、

MeOH で調製した 0.04 ng/mL の QC 溶液を注入して、 システム適合性試験を実施しま

表 2. LC/MS/MS 条件

設定値

パラメータ

Agilent InfinityLab Poroshell 120 Phenyl Hexyl（3.0 × 150 mm、1.9 µm）および

分析カラム

ガードカラムオートサンプラにインラインフィルタを装着

カラム温度50 ° C

注入量5 µLA）0.01 % 酢酸の水溶液

移動相B）0.01 % 酢酸の MeOH 溶液流量

0.5 mL/min
時間（分）

した。

グラジエント

%A%B

0.00

5545

0.50

5545

2.00

2575

5.00

2575

8.00

2080

9.00

2080

9.01

0100

12.00

0100

12.01

5545

分析終了時間12.02

合計分析時間

15 分

3分

ポストタイム表 3. データ取り込みパラメータ
Agilent 6495C MS の使用条件

モード

MRM

気化器温度

450 °C

ドライガス温度

300 °C

ドライガス流量13 L/min

ネブライザ圧力50 psi

キャピラリ電圧4,500 V

シースガス流量12 L/minシースガス温度

385 °C

ノズル電圧

2,000 V

高圧 RF（＋）

0

高圧 RF（－）

130

低圧 RF（＋）

0

低圧 RF（－）

デルタ EMV（－）

化合物名

カルボキシ-THC
カルボキシ-THC d3

6140800
プリカーサイオン

プロダクトイオン

CECAV

343.2245.1

324343.2

191.1

333346.2

302.2

203346.2

194.1

203

極性

ネガティブ
ネガティブ
ネガティブ
ネガティブ結果と考察

毛髪中のカルボキシ-THC を抽出するための表 4. 定量下限（0.0002 ng/mg）の毛髪マトリックス中カルボキシ-THC に対する各サンプル前処理メソッドの比較
サンプル前処理メソッド

サンプル前処理メソッドとして、さまざまな手法が発表されています。これらのメソッドの多

くでは、予備処理として、1）毛髪サンプルの特長

洗浄、2）細断または粉砕、3）分析用毛髪サンプル 10 ～ 50 mg の計量、の 3 つのステップを行います。その後、毛髪 を酸性または 塩基性溶液中でインキュベーションしてから、有機溶媒で抽出します。

今回の研究では、NaOH による塩基分解を選択しました。これにより得られた 毛髪分解混合液 を LLE で抽出した後、Captiva EMR―

Lipid カートリッジでクリーンアップしました。

この一連のメソッドにより塩、タンパク質、および脂質を効率的に除去することで、回収率を高 め、イオン抑制を抑えることができます。

SPE-アニオン交換と LLE、または SPE-アニオン交換のみ

SPE-カチオン交換と LLE、または SPE-カチオン交換のみ

検量線では、4 回または 2 回の繰り返し注

1.8

ソッドを比較したものです。

RSD は、毛髪サンプル中濃度 0.2 ng/g の 7

2.0
Relative responses

す。また、回収率は平均 110 % に維持され、極 LC/MS システムの 3 倍のレスポンスが得• 分解ステップで得られた溶液から塩および• LLE およびアニオン交換よりクリーンな• 注入する最終的な抽出液が LLE よりクリーン• 抽出およびクリーンアッププロトコルの• 成分の回収率が高いタンパク質を除去• イオン抑制効果を低減• 注入する最終的な抽出液が LLE よりクリーン• イオン抑制効果を低減

高いイオン抑制効果が生じる

ステップ数が多い抽出液が得られるが、成分の回収率が低下ステップ数が多い• 抽出およびクリーンアッププロトコルのステップ数が多い

Carboxy-THC
y = 0.613382 * x + 0.079544
R2 = 0.9958

1.00.80.60

ル四重極 LC/MS では、6470A トリプル四重• 抽出およびクリーンアッププロトコルの1.2

サンプルについては 7.8 % でした。図 5 に示パイクした毛髪サンプルに対し、6495C トリプ• 注入する最終的な抽出液が LLE よりクリーン効果が生じる

1.40.4

すように、カルボキシ-THC を 0.2 ng/g でス• LLE よりクリーンな抽出液が得られるが、タンパク質を除去機器での分析時に問題が生じる

1.6個の繰り返しサンプルについては 8.8 %、毛髪サンプル中濃度 0.8 ng/g の 7 個の繰り返し• 分解ステップで得られた溶液から塩および質、脂質を除去

LLE と Agilent Captiva

2.2

直線性が得られました。これを図 4 に示しま• メソッドの堅牢性に欠け、高いイオン抑制• 分解ステップで得られた溶液から塩、タンパク

EMR―Lipidに用いられている一般的 なサンプル前処理メ

3.2 ng/g において R2 >0.99 という良好 な• 適用が容易• 幅広い化合物を抽出

表 4 は、毛髪サンプルの抽出とクリーンアップ

入 により、 キャリブレーション範囲 0.15 ～• ターゲット成分と共溶出した脂質により、タンパク質を除去

LLE

欠点

• 分解ステップで得られた溶液から塩および

0.2
00.2

0.4

0.6

0.8

1.0

1.2

1.4 1.6 1.8 2.0Concentration (ng/g)

2.2

2.4

2.6

2.8

3.0

3.23.4図 4. 毛髪サンプル中の 0.15 ～ 3.2 ng/g のカルボキシ -THC の検量線。青の三角形は、毛髪サンプル中濃度がカットオフ限度 0.2 および 0.8 ng/g の 7 個の繰り返し抽出液の分析結果を示します。

られました。図 6 は、両方の MRM における毛髪マトリックスブランクとカットオフ限度の 5つの繰り返しサンプルの分析結果です。

7Agilent 6470A
×101-ESI MRM Frag = 150.0 V CID at 40.0 (343.2 & 191.1)
343 & 191

2.6×101
1.9
1.8
1.7
1.6
1.5
1.4
1.3
1.2
1.1
1.0
0.9
0.8
0.7
0.6
0.5
0.4
0.3
0.2
0.1
0

Five replicates at 0.2 ng/g

2.4Counts (%)

2.0
1.8

* 8.059
1,723

1.6

Prespiked hair

1.4
1.2

Five replicates at 0.2 ng/g

* 8.064
4,542

Counts (%)

2.2-ESI MRM Frag = 120.0 V CID at 32.0 (343.2 & 245.1)
343 & 245

1.00.80.6
0.4
0.20
7.6 7.7 7.8 7.9 8.0 8.1 8.2 8.3 8.4 8.5

Prespiked hair

7.6 7.7 7.8 7.9 8.0 8.1 8.2 8.3 8.4 8.5

Acquisition time (min)Acquisition time (min)Agilent 6495C
×101 -ESI MRM Frag = 380.0 V CID at 33.0 (343.2 & 191.1)

3.7* 8.491
6,647.79

1.9
1.8
1.6
1.5
1.4

-ESI MRM Frag = 380.0 V CID at 32.0 (343.2 & 245.1)
343 & 245
* 8.491
14,117.19

3.5

Prespiked hair
0.2 ng/g
0.15 ng/g
0.1 ng/g

1.7Counts (%)×101343 & 191

1.3

3.3

Prespiked hair

3.1
Counts (%)

2.0

0.2 ng/g
0.15 ng/g
0.1 ng/g

2.9
2.7
2.5
2.3

1.2
1.1

2.1

1.0

1.9

0.9

1.7

0.8

1.5

0.7

1.3

0.6

1.1
8.3

8.4

8.5

8.6

Acquisition time (min)

8.7

8.3

8.4

8.5

8.6

Acquisition time (min)図 5. Agilent 6470A および 6495C トリプル四重極 LC/MS による 0.2 ng/g の毛髪サンプル中カルボキシ-THC の分析結果

88.7

カウント（%）

毛髪ブランク

カウント
（%）

×101
3×101
43210210カウント（%）

毛髪サンプル中濃度
0.2 ng/g の最初の抽出液

2×101
3カウント
（%）

×10
4

1210×104

1

カウント
（%）

毛髪サンプル中濃度
0.2 ng/g の 2 番目の抽出液

20×101
3カウント
（%）

0210

毛髪サンプル中濃度
0.2 ng/g の 3 番目の
抽出液

カウント
（%）

42×101
3

カウント
（%）

×101

2
10×101
カウント（%）

毛髪サンプル中濃度
0.2 ng/g の 4 番目の抽出液

42×101
3カウント
（%）

02
10×101×101
3

毛髪サンプル中濃度
0.2 ng/g の 5 番目の抽出液

カウント
（%）

4206.06.57.0

7.5
8.0
8.5
9.0
Acquisition time (min)

9.5

10.0

カウント（%）

02
10

6.0

6.5

7.0

7.5
8.0
8.5
9.0
Acquisition time (min)

9.5

10.0

図 6. 毛髪ブランクと 0.2 ng/g の 5 つのプレスパイク毛髪サンプルを MRM 343.2 & 245.1 および 343.2 & 191.1 で分析した結果

9結論

LLE と Agilent Captiva EMR―Lipid に よるクリーンアップを用 いた 堅牢 なサンプル 前

参考文献
1.

処理 メソッドを 開発し、LC/MS/MS を 使用して毛髪中 のカルボキシ-THC の分析性能 を確認しました。また、毛髪マトリックスサンプ

ルを Agilent 6495C トリプル 四重極 LC/MS

2.

システムと Agilent 6470A トリプル 四 重 極ることがわかりました。このメソッドにより、メ

COOH, CBN and CBD, by GC/MS-Finding Cannabinoids in Hair Does

EI. Comparison with GC/MS-NCI for

Not Prove Cannabis Consumption.

Delta(9)-THC-COOH, Forensic Sci. Int.

Sci.Rep. 2015, 14906.

2002, 128(1-2), 66–78.

SoHT（Society of Hair Testing）公式

ウェブサイト：https://www.soht.org/Blahd, W. H. Hair Analysis for Drugs

ルーチン分析では、すでに数百のサンプルが1433–1453.

れました。新たに開発したメソッドを使用した

4.

Cirimele, V.; Kintz, P.; Mangin, P.
Testing Human Hair for Cannabis.
175–182.

5.

Wilkins, D.et al. Quantitative Analysis
of THC, 11-OH-THC, and THCCOOH
in Human Hair by Negative
Ion Chemical Ionization Mass
Spectrometry. J. Anal.Toxicol.1995,19(6), 483–491.

6.

Moore, C.; Guzaldo, F.; Donahue, T.
The Determination of 11-Nor-555–558.

本製品は一般的な実験用途での使用を想定しており、医薬品医療機器等法に基づく登録を行っておりません。

本文書に記載の情報、説明、製品仕様等は予告なしに変更されることがあります。

アジレント・テクノロジー株式会社© Agilent Technologies, Inc. 2019
Printed in Japan, December 16, 20195994-1635JAJP
DE. 1844212963

a Large Sample of Hair Specimens.
Life Sci.2003, 74(4), 463–469.

9.

Uhl, M.; Sachs, H. Cannabinoids
in Hair: Strategy to Prove
Marijuana/Hashish Consumption,Forensic Sci. Int. 2004, 145(2-3),

143–147.
10. Engelhart, D. et al. Rapid, Robust,and Sensitive Detection of 11-NorDelta(9)-Tetrahydrocannabinol9-Carboxylic Acid in Hair.
Agilent Technologies application note,publication number 5990-7535EN,
2014.
11. Stevens, J.; Zhao, L. Efficient

Agilent Captiva EMR―Lipid andInjection. J. Anal.Toxicol.2001, 25(7),email_japan@agilent.com

tetrahydrocannabinol: Analysis of

9-Carboxylic Acid (THC-COOH)

Spectrometry and High-Volume0120-477-111

11-Nor-9-carboxydelta(9)-Quantitative Analysis of THC andGas Chromatography-Mass

カストマコンタクトセンタ

the Potential of a �Color

Delta(9)-Tetrahydrocannabinolin Hair Using Negative Ion

www.agilent.com/chem/jp

Mieczkowski, T. Assessing
Effect� for Hair Analysis ofof Abuse. J. Forensic Sci. 1989, 34(6),Forensic Sci.Int. 1995, 70(1–3),

ホームページ

8.

Baumgartner, W. A.; Hill, V. A.;

ソッドの 堅牢性 と感度 が 高 まることが 確認さ評価されています。

for Delta(9)-THC, Delta(9)-THC-statement-2011.
3.

Baptista, M. J.; et al. Hair Analysis

Bjoern, M.; Nadine, R.; Auwarter, A.

statements/9-nicht-kategorisiert/85-LC/MS システムで分析して感度を比較したところ、6495C の方が 6470A より高感度であ7.

Metabolites in Human Plasma using
LC/MS/MS. Agilent Technologies

application note, publication number

5991-8636EN, 2017.