養蜂技術指導手引書 Ⅱ

一般社団法人

日本養蜂協会〒104-0033
東京都中央区新川二丁目6-16
馬事畜産会館6階

TEL 03-3297-5645
FAX 03-3297-5646

ミツバチの感染症 ヨーロッパ腐蛆病【お問い合わせ】

http://www.beekeeping.or.jp

養蜂技術指導手引書 Ⅱ

ミツバチの感染症

ヨーロッパ腐蛆病

一般社団法人 日本養蜂協会

一般社団法人 日本養蜂協会

養蜂技術指導手引書 Ⅱ

平成27年度産地収益力増強支援事業
養蜂等振興推進事業（全国推進事業）

養蜂技術指導手引書 Ⅱ

ミツバチの感染症

ヨーロッパ腐蛆病
髙松大輔
芳山三喜雄
荒井理恵

一般社団法人 日本養蜂協会

目次ヨーロッパ腐蛆病とは・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・

4

・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・

6

・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・

8

発症過程

疫学

ヨーロッパ腐蛆病菌の歴史と特徴

発生状況

診断

10

・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・

12

・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・

14

・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・

治療と予防

最後に

18

・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・

19

・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・

ヨーロッパ腐蛆病とは

表1 ヨーロッパ腐蛆病とアメリカ腐蛆病の比較

ヨーロッパ腐蛆病

Point─ ヨーロッパ腐蛆病は幼虫の細菌感染症であり、法定伝染病に指定されている。
─ 4〜5日齢の幼虫が死亡することが多い。
─ 死亡幼虫は乳白色〜褐色の水っぽい、時に酸臭を発する腐蛆となる。

アメリカ腐蛆病

主な症状

4〜5日齢の無蓋幼虫が死亡
腐蛆は水っぽい有蓋幼虫が死亡腐蛆は粘稠性におい酸臭、魚が腐敗した臭い（一様ではない）

膠臭、納豆臭

ヨーロッパ腐蛆病菌

アメリカ腐蛆病菌

Melissococcus plutonius

Paenibacillus larvae

菌の形

数珠状に連なる紡錘形の球菌

細長い桿状の菌

芽胞形成能

なし

あり

原因菌

ヨーロッパ腐蛆病は、ヨーロッパ腐蛆病菌（Melissococcus plutonius）によって引き起こされるミツバチの幼虫の細菌感染症である＊14。家畜伝染病予防法では、（家畜伝染病）に指定されていアメリカ腐蛆病と共に「腐蛆病」として法定伝染病Aる。ヨーロッパ腐蛆病の発症時期はアメリカ腐蛆病より早く、巣房に蓋がされ蓋がされた後に死亡す
る前の 4 〜 5 日齢の幼虫が死亡することが多い【表 1】が、ることもある。また、症状が軽い場合、蛹になり、さらに成虫にまでなる場合もある。
死亡幼虫は巣房内で無秩序に横たわり、乳酸菌などの二次感染菌の影響で変性・分解され、張りがなくなり、
乳白色〜褐色の水っぽい、時に酸臭を発する腐アメリカ腐蛆病で死亡した個体とは異なり、腐蛆には粘蛆となる【図 1C】。しかし、稠性はなく、
糸を引くことはない。腐敗前の死亡幼虫を解剖するとチョークの粉様の白い凝集物が中腸内に観察される。通常、
腐蛆は育児蜂によって巣からBC排除されるが、排除されない場合は、最終的に乾燥した鱗片状の死体となる。しかし、
アメリカ腐蛆病によって形成される鱗片状の死体とは異なり、巣房から容易に剥がすことができる。感染が蜂群内に広がると、巣脾はたくさんの無蓋の巣房が有蓋の巣房と混ざり合う状態になる【図 1AB】。

図1 ヨーロッパ腐蛆病発症蜂群の巣脾
（A-B）
と腐蛆
（C）

4

養蜂技術指導手引書 Ⅱ

ミツバチの感染症：ヨーロッパ腐蛆病

5

発症過程

アメリカ腐蛆病の場合は、アメリカ腐蛆病菌自身が産生するタンパク質分解酵素が死亡した幼虫の腐敗に関与していると考えられているが、ヨーロッパ腐蛆（腐敗菌）が幼虫の腐敗に関与し病の場合は、幼虫の死後に感染した二次感染菌

Enterococcus faecalis、ているといわれている。代表的な二次感染菌としては、
Paenibacillus alvei、Brevibacillus laterosporus などが知られている。これら腐Point敗菌の中には、乳酸発酵をするいわゆる乳酸菌の仲間も含まれており、
そのよ─ ヨーロッパ腐蛆病は幼虫の腸管感染症である。

うな菌が感染して優勢になると、幼虫の死体からたくさんの酸が産生され、酸

─ 幼虫の死因は、
ヨーロッパ腐蛆病菌が腸内で餌の栄養分を横取りする臭が漂うようになる。

ことによる餓死とも考えられているが、発症メカニズムには不明な点も多い。

ヨーロッパ腐蛆病は、ミツバチの幼虫の腸管感染症であり、幼虫はヨーロッパ
腐蛆病菌に汚染された餌を食べることによって感染する。幼虫の最も重要な仕事は「食べて大きくなること」である。そのため、幼虫の体内でもっとも大き（中腸と後腸）な容積を占めるのが、食物の消化吸収の場となる巨大な消化器官である【図 2A】。幼虫に食べられたヨーロッパ腐蛆病菌は、病気の発症過程を通じて主に中腸に留まって増殖するのが本病の特徴である。

A

中腸の表層には、中腸上皮細胞が並んでいるが、幼虫によって食べられた餌は食べた餌

直接中腸上皮細胞に接触しているわけではなく、餌と中腸上皮細胞の間には（いしょくまく）」と呼ばれる層が存在する【図 2A】。囲食膜はキチンやムチン「囲食膜

原体の侵入から保護する役割を持つ。また、囲食膜は食物の効率的な消化吸収にも役立っており、昆虫の幼虫の正常な発育に必要な組織と考えられている。
中腸内に到達したヨーロッパ腐蛆病菌は、まず、この囲食膜の表層に局在する。
そこで幼虫が食べた餌を栄養分にして爆発的に増えていき、
やがて、
本来は食
べた餌で満たされるはずの中腸内を菌が埋め尽くしてしまう。ヨーロッ【図 2BCD】

パ腐蛆病発症幼虫を解剖したときに見られる中腸内の白い凝集物はこの菌塊

中腸口ヨーロッパ腐蛆病菌様タンパク質などから構成されており、腸管の表面を物理的・化学的刺激や病

F

C

B

囲食膜

中腸上皮
後腸

二次感染菌

囲食膜の変性・消失
中腸上皮細胞層の変性・崩壊DEである。時間の経過とともに、中腸上皮細胞を守っている囲食膜は変性・消失し
ていき、
菌が直接、
中腸上皮細胞に接する部分も見られるようになる。さらに病状が進むと、
中腸上皮細胞の変性も見られるようになる。死亡したと考えられ（体内る幼虫では、崩壊した中腸上皮細胞層から腸管外に漏れ出た菌が血体腔の組織や器官の間の空間）にも観察されるようになる【図 2E】。また、一部の菌はマル

血体腔に
漏れ出た菌

（脊椎動物の腎臓に相当する器官）の中にも観察されるが、中腸以外で観察
ピーギ管される菌の数は多くない。本病では、ヨーロッパ腐蛆病菌は基本的に中腸内でのみ増殖すると考えられており、ヨーロッパ腐蛆病菌やその他の二次感染菌が血体腔に侵入する前に幼虫が死亡していると考えられている。
腸内で増殖した菌が、幼虫が食べ幼虫の直接の死因はまだ不明な点が多いが、た餌の栄養分を横取りして消費してしまうため、幼虫が餓死しているともいわ
れている。この餓死説については検証の余地が残されているが、後述するように、幼虫の栄養状態の悪化は本病の発症や症状の重症化に影響しているようで

図2

ヨーロッパ腐蛆病の発症過程

A ヨーロッパ腐蛆病菌に汚染された餌を食べて感染。
B-D 菌は中腸の囲食膜表層で増殖し、中腸内を埋め尽くす。
E 囲食膜は変性・消失し、菌が中腸上皮細胞に接する部分も見られるようになる。中腸上皮細胞も変性・崩壊し、死亡する。中腸から漏れ出た菌が血体腔にも観察されるが、数は多くない。
F 死亡幼虫が二次感染菌の影響で腐敗する。
血体腔：昆虫などの開放血管系を持つ生物の組織・器官の間の空間。血液（血リンパ）
で満たされている。

ある。
6

養蜂技術指導手引書 Ⅱ

ミツバチの感染症：ヨーロッパ腐蛆病

7

疫学

高

菌株の毒力

低

多

感染菌量

少

多

幼虫の数

少

少

育児蜂の数

多

る。

少

餌の量

多

ヨーロッパ腐蛆病の場合、幼虫がヨーロッパ腐蛆病菌に感染していたとして

重症

Point

─ ヨーロッパ腐蛆病の発症と重症化には、病原体の毒性や感染菌量だけでなく、蜂群内の育児蜂と幼虫の数のバランスや餌の量なども影響す

軽症・無症状も、
必ずしも典型的な症状を示すわけではない。幼虫は日齢にかかわらずヨー
ロッパ腐蛆病菌に感受性を示すが、成長した幼虫ほど感染による影響を受けに幼虫が摂取する菌量が多いほど死亡率が高くなる傾向もある＊21 。
くい＊7 。また、
近年、異なる遺伝子型の菌株は蜂群への病原性も異なることが示唆されてお感染しているヨーロッパ腐蛆病菌株のタイプによって個々の幼虫へのり＊10 、影響も異なる可能性がある。

無蓋幼虫
↓
発症
↓
排除

蜂群レベルでのヨーロッパ腐蛆病の発症や重症化の程度には、巣を汚染している菌株のタイプや菌量の違いだけでなく、餌不足などのストレスの程度も関係

無蓋幼虫
↓
発症・死亡
↓
排除

有蓋幼虫
↓
糞で汚染
↓
死亡

有蓋幼虫
↓
糞で汚染
↓
蛹・成虫に

する。幼虫の餌不足は、花粉などの不足によるものだけではなく、幼虫と育児蜂の数の不均衡によっても起こる。ヨーロッパ腐蛆病は流蜜期に多発する傾向にある。この時期は幼虫、成蜂ともに蜂群内の個体数が増加するが、蜜集めに駆り出される成蜂の割合も増えるため、相対的に育児蜂の負担が増える。その結図3

ヨーロッパ腐蛆病の発症・重症化に影響を及ぼす要因と感染幼虫が辿る経過

果、個々の幼虫への給餌量が減るため、腸内でのヨーロッパ腐蛆病菌による餌の横取りが幼虫の栄養状態や健康状態に大きく影響し、病状が悪化すると考え③ 巣房に蓋がされた後に蛹になれないまま死亡する。

られている【図 3】。

時に成虫にまでなる。
④ 蛹になり、異常を示した幼虫は、通常、育児蜂によって巣から排除される。悪天候などによ①と②の場合では、菌が幼虫の体内に閉じ込められたまま巣から排除される

り野外で採蜜ができなくなり、一時的に巣内の育児蜂の数が増えると、幼虫へが、③と④の場合では、幼虫がヨーロッパ腐蛆病菌を大量に含んだ糞を排泄し、の世話が行き届くようになり、症状が目立たなくなることがある。しかし、幼巣を汚染することになる。

虫内では菌が蓄積され続けるため、採蜜が再開して育児蜂の数が再び減少すると、症状が悪化し、典型的なヨーロッパ腐蛆病の症状を示すようになる。一方、ヨーロッパ腐蛆病菌に汚染された蜂群では成蜂も保菌している場合が多い。

重症化の結果、死亡して排除される幼虫が増えると、蜂群を汚染しているヨー

特に、幼虫のいる巣房の近くで働いている働き蜂は、巣の入り口付近の蜂より

ロッパ腐蛆病菌の量は減ることになる。さらに、幼虫が食べられる餌の量も蜂群内で病原体も保菌率が高い＊23 。ヨーロッパ腐蛆病菌を保菌する働き蜂は、増えるため、栄養状態が改善し、症状が緩和される。このように、菌の毒力や感を拡散させるだけでなく、他の蜂群や養蜂場に病原体を運ぶこともある＊9,20。ま

染菌量に加え、蜂群内の蜂の数とバランスや給餌量も本病の病状に影響する。

盗蜜にた、ハチミツがヨーロッパ腐蛆病菌に汚染されていることもあり＊18,20、

従って、
育児蜂の数や給餌量が安定すると症状が改善されることが多い。

よって病原体が拡散する経路も考えられる。

結
上記のように、感染幼虫は、
感染菌量や給餌量の程度によって病状が異なり、Enterococcus faecalis や Paenibacillus alvei といった二次感染菌がヨーロッパ

果として下記の 4 つの経過のいずれかを辿る

。

【図 3】

8

腐蛆病の病状に影響を及ぼしている可能性も示唆されているが、二次感染菌の死亡する前に巣から排除される。
① 巣房に蓋がされる前に発症し、役割については不明な点が多い。二次感染菌の影響については、
今後のさらな

巣から排除される。
② 巣房に蓋がされる前に発症・死亡し、る研究が必要である。

養蜂技術指導手引書 Ⅱ

ミツバチの感染症：ヨーロッパ腐蛆病

9ヨーロッパ腐蛆病菌の歴史と特徴

表2-1 ヨーロッパ腐蛆病菌の発見と分類の歴史

1912年

Whiteによりヨーロッパ腐蛆病の原因菌候補としてBacillus pluton という菌種名で報告される（顕微鏡下での観察結果を基にしており、培養には成功＊30
していない）。

1957年

Bailey により培養法が確立され、菌の詳細な性状が報告される。菌種名が、＊5Streptococcus pluton に改名される。

1982年

BaileyとCollinsによって再分類され、新属新菌種となる。それに伴い、
菌種名＊8が、Melissococcus pluton に変更される。

1998年

＊28
菌種名が、
Melissococcus plutonius に微修正される。
現在に至る。

Point─ ヨーロッパ腐蛆病菌は100年以上前から知られている病原体である。
─ ヨーロッパ腐蛆病菌は株間で多様性があり、菌株によって病原性も異なると考えられている。

ミツバチの腐蛆病は「発症した蜂群から腐敗臭が発せられる病気」として古くからその存在は知られていたが、当初は、アメリカ腐蛆病とヨーロッパ腐蛆病

表2-2 アメリカ腐蛆病菌の発見と分類の歴史

1906年

Whiteによりアメリカ腐蛆病を発症した幼虫から分離培養された菌が、＊29
Bacillus larvae として報告される。

1950年

KatznelsonによりPowdery scale病を発症した幼虫から分離培養された菌が、＊19
Bacillus pulvifaciens として報告される。

1993年

B. larvae とB. pulvifaciens が、Paenibacillus 属に再分類され、それぞれ、＊4
Paenibacillus larvae とPaenibacillus pulvifaciens に改名される。

1996年

アメリカ腐蛆病の原因菌として分離されたP. larvaeと、Powdery scale 病の原同じ菌種であることが明らかになる。
因菌として分離された P. pulvifaciensが、それぞれ、Paenibacillus
これら2つの菌種は2つの亜種として再分類され、＊17
larvae subsp. larvae とPaenibacillus larvae subsp. pulvifaciens と改名される。

2006年

＊15
2つの亜種が撤廃され、菌種名が Paenibacillus larvae に統一される。
現在に至る。

は区別されていなかった。しかし、20 世紀初頭にアメリカの昆虫学者 White（アメリカ腐蛆病菌とヨーロッパ腐蛆病菌）の存在がによって、2 つの異なる病原体

本病には異なる病原体が関与する 2 つの病気が含確認されたことで【表 2】＊29,30、
まれることが認識されるようになった。しかし、ヨーロッパ腐蛆病菌の発見

White 自身は本菌を培養すること
は顕微鏡下での観察結果を基にしており、はできなかった。そのため、1957 年に Bailey によって培養法が確立されるまその細菌学的特性は長らく未知であった。発見当初は Bacillus pluton と、
で＊5 、

1957 年の Bailey の報告では Streptococcus pluton と呼ばれていたヨーロッパ腐蛆病菌は、1982 年に Bailey と Collins によって新属新菌種 Melissococcus
pluton として再分類され＊8 、1998 年に菌種名が Melissococcus plutonius に修現在に至っている【表 2】。
正されて＊28 、（数珠状に連なる）紡錘形の球菌で【図 4】、
運動性はヨーロッパ腐蛆病菌は、連鎖するAない。アメリカ腐蛆病菌とは異なり芽胞は形成しない。しかし、ミツバチの体外でも比較的長期間生存できるため、
ヨーロッパ腐蛆病が発生した養蜂場では翌年も再発しやすいといわれている。
菌の遺伝子情報を基にグループ分けをすると、世界各国で分離されるヨーロッ（クローナルコンプレックス［CC］3, CC12, CC13）
パ腐蛆病菌株は 3 つのグループに分かれることが明らかになっている。これらのグループのうち、特に CC12の菌は培養性状や生化学性状が一般的に知られているヨーロッパ腐蛆病菌の性状と大きく異なるため

15 ページ【表 3】＊3

B、
非典型株と呼ばれることもある。また、イ

CC3 のグループの菌がギリスで行われた大規模な疫学調査の結果、野外では、他のグループの菌より蜂群に大きな被害を与えているという調査結果が得ら異なるグループのヨーロッパ腐蛆病菌株は、蜂群に対する病
れている＊10 。即ち、原性も異なり、養蜂業に与える経済的被害も異なる可能性がある。日本にも、
こ各グループの株によるヨーロッ
れら 3 つのグループの株が存在しているが＊25 、
パ腐蛆病の発生頻度や被害の程度などについては調査がされておらず、十分な情報はない。

10

養蜂技術指導手引書 Ⅱ

図4 ヨーロッパ腐蛆病菌の形態
A グラム染色像。培地に発育した菌をスライドガラス上で染色し、光学顕微鏡で観察。
なお、感
染幼虫の直接鏡検でも同様の像が観察される。
B 幼虫の腸内に感染した菌を電子顕微鏡で観察。
ミツバチの感染症：ヨーロッパ腐蛆病

11

発生状況

Point

─ ヨーロッパ腐蛆病は日本を含む世界中の国々で発生しているが、日本での正確な発生件数は統計が取られていない。
─ ヨーロッパ腐蛆病は多様なミツバチ種で発生する。
ヨーロッパ腐蛆病が……
存在する
存在すると思われる

ヨーロッパ腐蛆病は、ニュージーランドなどの一部の国を除き、養蜂が行われ存在しないと思われるている多くの国で発生が認められている【図 5】＊13 。農林水産省がまとめている監

存在しない

視伝染病発生年報によると、
毎年、日本でも、40 〜 80 戸で計 100 〜 400 群程度

情報なしの腐蛆病の発生が報告されている。しかし、この数字には、
アメリカ腐蛆病とヨーロッパ腐蛆病の両疾病が含まれている。また、確定診断がされないまま自主的に処分されている腐蛆病を疑う蜂群も存在すると考えられる。従って、
日本におけるヨーロッパ腐蛆病の正確な発生件数はわかっていない。
原因菌のヨーロッパ腐蛆病菌は、比較的幅広い種のミツバチに感染し、病気を

図5 ヨーロッパ腐蛆病の世界分布（本図は、
EllisとMunnによる蜂病の分布に関する総説＊13 に記載された情報を基に作製した）引き起こすことができると考えられる。実際、
本病は、養蜂に一般的に用いられ（ Apis mellifera【図 6A】）に加えて、中国やインドのトウヨているセイヨウミツバチ（ Apis cerana【図 6B】）、（ Apis laboriosa
ネパールのヒマラヤオオミツバチ
ウミツバチ）でも発生が確認されている＊1, 6,11,22,31。また、（ Apis
近年、
タイのコミツバチ【図 6C】A

B

C

D

florea【図 6D】）の幼虫の腸内からもヨーロッパ腐蛆病菌の遺伝子が検出されていヨーロッパ腐蛆病菌には幅広いミツバチ種に感染でき
る＊24 。これらの報告は、る能力があることを示唆している。なお、
現在のところ、
ヨーロッパ腐蛆病に対して抵抗性を示すセイヨウミツバチの系統は知られていない。
日本では、1980 年代から全国的に散発的な発生が認められており、2013 年に（ Apis cerana japonica【図 6E】）での症例も確認された＊25 。
は初めてニホンミツバチ

本症例で確認された死亡幼虫も粘稠性のない、水っぽい状態に腐敗・変性しており、セイヨウミツバチでみられる典型的なヨーロッパ腐蛆病の腐蛆に類似し

セイヨウミツバチE

トウヨウミツバチ

ヒマラヤオオミツバチ

コミツバチ

F

た状態であった【図 6F】。

ニホンミツバチ
図6 ヨーロッパ腐蛆病の発症例（A,B,C,E）
および保菌例（D）が報告されているミツバチ種とヨーロッパ腐蛆病で死亡したニホンミツ／提供：F 香川県東部家畜保健衛生所
バチの腐蛆
（F）

12

養蜂技術指導手引書 Ⅱ

ミツバチの感染症：ヨーロッパ腐蛆病

13

診断

表3 異なるグループのヨーロッパ腐蛆病菌株の主な性状の相違
グループ a

性状

CC3

CC12

CC13

カリウム濃度が高い

嫌気

＋

＋

＋

培地での発育

好気

−

＋

−

ナトリウム濃度が高い

嫌気

−

＋

−

培地での発育

好気

−

−

−

β-グルコシダーゼ活性

−

＋

−

エスクリン加水分解−＋−

野外でのヨーロッパ腐蛆病の診断は、ミツバチの巣脾を目視で検査し、異常なL-アラビノースからの酸産生

−

＋

−

幼虫の存在を確認することによって行われる。しかし、他の原因で死亡した幼D-セロビオースからの酸産生

−

＋

−

虫もヨーロッパ腐蛆病発症幼虫と似た死後変化を辿ることがある。また、必ずサリシンからの酸産生

−

＋

−

Point

─ ヨーロッパ腐蛆病の診断は目視だけでは難しい。確定診断には、病原体の検出が必要である。
─ 疑わしい場合は、最寄りの家畜保健衛生所に連絡を!

（酸臭）がするわけではなく、幼虫の死亡時期が遅れ、アメしも特徴的なにおい

リカ腐蛆病のように巣房に蓋がされた後に死亡することもある。従って、多くの症例では確定診断のために、
腐蛆や巣脾などの検体を持ち帰り、検査室においてヨーロッパ腐蛆病菌を検出する必要がある。本項では、国内で一般的に行（PCR 法）を中心にヨーロッ
われている分離培養法とポリメラーゼ連鎖反応法

パ腐蛆病菌の検出法について解説する。

ヨーロッパ腐蛆病菌の検出法

蜂群への被害の大きさbCC3 ≥ CC12 ≥ CC13

a CC3とCC13の菌株は古くから知られているヨーロッパ腐蛆病菌の典型的な性状を示
CC12の菌株は他のグループと大きく異なる性し、典型株と呼ばれることもある。一方、状を示し、非典型株と記載されることもある。
なお、
生化学性状は株によって完全に当てはまらない場合もある。
b イギリスでの調査結果＊10を基にしており、他の国でも同じことが当てはまるかは不明。
表4 ヨーロッパ腐蛆病菌の分離培養に用いられる培地の組成

Bailey培地a

KSBHI培地b

顕微鏡による観察

酵母エキス

1g

BHI培地

3.7 g

感染幼虫内のヨーロッパ腐蛆病菌を顕微鏡下で直接確認する方法である。適

ブドウ糖

1g

可溶性澱粉

1g

当な容器に入れた腐蛆をエーゼなどで乳剤化後、清潔なスライドガラス上に薄

可溶性澱粉

1g

KH2PO42.04 g

く塗り広げ、塗抹標本を作製する。標本は風乾後、火炎固定・グラム染色を行い、KH2PO41.36 g

寒天

1.5 g

寒天

1.5 g

蒸留水

100 ml

染菌量により様々である。また、二次感染菌が存在している場合、
グラム陽性

蒸留水

100 ml（青く染まる長方形の菌体）やグラム陰性菌（赤く染まる菌体）が観察されること
桿菌

a 5M KOHでpH6.6に調整し、115℃で10分、高圧滅菌後、
滅菌シャーレに分注して作製する。
b 115-121℃で10-15分、高圧滅菌後、
滅菌シャーレに分注して作製する。

光学顕微鏡で観察する。幼虫がヨーロッパ腐蛆病菌に感染している場合、青く（グラム陽性に）染まる紡錘形の菌体【図 4A】が観察される。
観察される菌体の数は感もある。なお、
二次感染菌の一つである Enterococcus faecalis はヨーロッパ腐蛆病菌に似た形態を示し、両者を見分けることは難しいため、本法はあくまで
補助診断法であることに注意する。

が必要である【表 3】＊3 。CC12 のグループの株も同様の条件で発育できるため、
本
密閉容器の中で酸素吸菌の分離にはカリウム塩を添加した培地【表 4】を使用し、腐蛆からの菌の分離培養

収・炭酸ガス発生剤を用いて嫌気培養する。ヨーロッパ腐蛆病菌は円形の白い病変部に潜む病原体を適当な培地を用いて培養し、分離する方法は、
細菌感染

発育速度が比較的遅いため、コロニーが出
小さなコロニー【図 7】を形成するが、症の確定診断を行うために最も一般的に行われている検査法の一つである。

現するまでに 4 日から 1 週間程度かかることもある。ヨーロッパ腐蛆病菌を疑ヨーロッパ腐蛆病の場合、分離培養の材料には腐蛆を用いる。乳剤化した腐蛆うコロニーが出現した場合、よく単離されたコロニーを新しい培地に植え継を寒天培地に塗抹して 35 〜 37℃で培養を行う。ヨーロッパ腐蛆病菌のうち、ぎ、純粋培養する。純粋培養した菌をグラム染色し、グラム陽性の紡錘形レン

CC3 と CC13 のグループの菌株（典型株）は、その発育に、（PCR 法）によって後述する遺伝子検出法
サ球菌【図 4A】であることを確認した後、（酸素のない）または微好気性（酸素の薄い）の条件① 嫌気性

ヨーロッパ腐蛆病菌であることを確認する。

② 二酸化炭素③ ナトリウム濃度よりカリウム濃度の方が高い培地
14

養蜂技術指導手引書 Ⅱ

分離培養による病原体の検出は、その病気を引き起こしている菌株を手に入れミツバチの感染症：ヨーロッパ腐蛆病

15

ることができ、それを用いて疫学的な解析を行うことができる点が利点であに、
CC12 の菌株の検出には適さないという欠点もある【図 9】＊26 。従って、
本キッる。しかし、発育速度が遅いヨーロッパ腐蛆病菌の場合、検査結果が得られるまトで陰性の結果が出てもヨーロッパ腐蛆病を否定することはできない点を注

原因菌の分離頻度には検査担でに 1 〜 2 週間の時間がかかってしまう。また、意する必要がある。

当者の熟練度が影響してしまうことも欠点の一つである。
ヨーロッパ腐蛆病菌感染幼虫

遺伝子検出法肉眼で病原体を確認できる分離培養法は、最も説得力のある検査結果が得られる方法である。しかし、ヨーロッパ腐蛆病の場合、
上述のように検査結果が得られるまでに時間がかかる。また、
ヨーロッパ腐蛆病で死亡した幼虫内では、時間の経過とともに二次感染菌の数が増えるため、
腐蛆からのヨーロッパ腐蛆病菌

図7 ヨーロッパ腐蛆病菌のコロニー
1- 2 ㎜以下で、円形の白く、直径は通常、
艶のあるコロニーを形成する。CC 12のグループの株は他の株よりやや大きいコロ
ニーを作る傾向がある。

検査に
要する
時間

DNA抽出

1時間

Duplex PCR

3.5時間の分離培養が困難な場合もある。一方、
近年の分子生物学の発展とともに、微量（DNA の塩基配列）を検出し、病原体の存在な検体から病原体に特徴的な遺伝子を証明する遺伝子検出法が様々な感染症に対して開発され、診断の現場で広く利用されている。
これまで様々な遺伝子検出法が開発されているが、もっとも一般的に用いらPCR 法である。PCR 法は、生物が持つ巨大な DNA 分子の中れている方法が、

1

2

3

4

5

6

7

8

結果確認

から自分が望んだ特定の DNA 断片だけを選択的に増幅することができる方法である。PCR 法は、① 極めて微量な検体から DNA を増幅できる。

増幅したヨーロッパ腐蛆病菌の② DNA の増幅に要する時間が短い。
という特徴がある。検体を検査室に持ち込み、比較的高額な遺伝子増幅装置を

1時間

DNA

用いる必要はあるものの、装置自体は家畜保健衛生所等にも普及しているため、病原体の検出には適した方法だといえる。

図8 ヨーロッパ腐蛆病菌の遺伝子検出法：検査の流れと必要な時間
ヨーロッパ腐蛆病菌感
幼虫から抽出したDNAからヨーロッパ腐蛆病菌のDNA断片を増幅する。
電気泳動法によって確認できる。
染幼虫から増幅されたDNAは、● ヨーロッパ腐蛆病菌CC3, CC13グループ株● ヨーロッパ腐蛆病菌CC12グループ株■ その他の菌ヨーロッパ腐蛆病においても、
これまでに複数種類の PCR 法が開発されてい半日程
る＊2,12,16。中でも、2014 年に報告された荒井らの Duplex PCR 法 ＊2 は、これまでの度の時間で感染幼虫から直接ヨーロッパ腐蛆病菌を検出でき【図 8】、PCR 法より正確な結果が得られる。また、各種性状が大きく異なる CC12 の（非典型株）を他のグループの菌株と区別できるため【図 8】、
本病
グループの菌株

DAT561株（CC12, 非典型株）
8.59 × 105 CFU/test

をよりよく理解するために必要な菌株の疫学情報も同時に得られる。さらに、

Duplex PCR 法は、培養法で分離した菌がヨーロッパ腐蛆病菌であることを
本 PCR 法はヨーロッパ腐確認するためにも利用できる。これらの理由から、

DAT351株（CC12, 非典型株）
7.88 × 105 CFU/test

DAT606株（CC3, 典型株）
4.53 × 105 CFU/test

蛆病の診断に極めて有用な検査法の一つとなっている。
テストライン抗体を用いた菌の検出
日本の家畜保健衛生所等での確定診断には使用されていないが、海外のいくつかの国では、Vita Europe 社が販売するヨーロッパ腐蛆病菌検出キット（http://

コントロールライン

www.vita-europe.com/products/efb-diagnostic-test-kit/） が診断に利用されてい＊27る。本キットでは、
ヨーロッパ腐蛆病菌に特異的に結合する抗体を利用して感染幼虫内の菌を直接検出することができる。本キットの最大の利点は野外で検査可能な点であり、養蜂場で診断を下し、直ちに適切な処置を施すことも可ヨーロッパ腐蛆病能である。しかし、本キットの検出感度は PCR 法より低く、菌を検出するためには幼虫内に一定量以上の菌が存在する必要がある。さら16

養蜂技術指導手引書 Ⅱ

図9 キットによるヨーロッパ腐蛆病菌の検出
サンプル中にヨーロッパ腐蛆病菌が存在すると、テストラインに青い線が現れる。本キッ
トでは
CC12の菌株（非典型株）
は検出されにくいため、結果の判定には注意が必要である。
ミツバチの感染症：ヨーロッパ腐蛆病

17

治療と予防最後にPoint

─ 発症蜂群は治療せず、焼却処分する。
─ 日本では承認されたヨーロッパ腐蛆病予防薬はない。
─ 予防には一般的な衛生対策が重要。
ヨーロッパ腐蛆病の研究はまだ十分に進んでおらず、その発症メカニズムや病
ヨーロッパ腐蛆病が発生した場合、日本では治療は行わず、蜂群を焼却処分す

原体の特性も不明な点が多い。本テキストは、現時点で報告されている情報やる。海外では、国によって発生した場合の対策が異なる。いくつかの国では抗筆者らの研究成果を基に執筆したものである。従って、研究のさらなる進展に生物質であるオキシテトラサイクリンが治療に使われることもあるが、薬によって、本稿に記載されていない新事実が明らかになり、新たな診断法や予防

よって症状を抑えて感染幼虫を生き長らえさせてしまうと、育児蜂が感染幼虫薬が開発される可能性もある。今後も本病に関する情報は更新され続けていを巣から排除しなくなり、結果的に巣内の汚染が長期化することもある。

くことを念頭に、本テキストをご利用いただきたいと思う。また、最新の情報が現場に届くように、我々も適切な情報発信を行っていきたいと考えている。

日本では、
アメリカ腐蛆病の予防薬として抗生物質ミロサマイシンを有効薬剤として含む「ミツバチ用アピテン」が使用されているが、ヨーロッパ腐蛆病菌

最後に、ヨーロッパ腐蛆病研究の遂行において多大なご協力いただきました家

は株によってミロサマイシンに対して耐性を示すため、本剤によるヨーロッパ

畜保健衛生所および共同研究機関の諸先生に深謝いたします。また、情報発信

腐蛆病の予防効果は限定的と考えられる。現在のところ日本では、
ヨーロッパの機会を与えていただきました一般社団法人日本養蜂協会の関係者の皆様に

腐蛆病の予防薬として承認されている薬剤はない。

心より感謝申し上げます。

他の感染症と同様に、
ヨーロッパ腐蛆病も養蜂作業を通じて人が拡散させてしまうこともある。従って、
蜂場への病原体の侵入の可能性をできるだけ減らし、
腐蛆病菌が侵入した場合の被害を最小限に抑えるためには、
適切な方法での巣箱や養蜂器具の消毒など、一般的な衛生対策が重要となる。また、ミツバチが受けるストレス量が増えるとヨーロッパ腐蛆病が発症しやすくなるため、ミツバ
チにとって快適な飼育環境を作ることも本病の予防には有効である。

18

養蜂技術指導手引書 Ⅱ

ミツバチの感染症：ヨーロッパ腐蛆病

19

参考文献

20

＊1 ─ Allen MF, Ball BV, Underwood BA. 1990. An isolate of Melissococcus pluton＊13 ─ Ellis JD, Munn PA. 2005. The worldwide health status of honey bees. Beefrom Apis laboriosa. J. Invertebr. Pathol. 55, 439‒440.
＊2 ─ Arai R, Miyoshi-Akiyama T, Okumura K, Morinaga Y, Wu M, Sugimura
Y, Yoshiyama M, Okura M, Kirikae T, Takamatsu D. 2014. Developmentof duplex PCR assay for detection and differentiation of typical and atypical
Melissococcus plutonius strains. J. Vet. Med. Sci. 76, 491-498.
＊3 ─ Arai R, Tominaga K, Wu M, Okura M, Ito K, Okamura N, Onishi H,
Osaki M, Sugimura Y, Yoshiyama M, Takamatsu D. 2012. Diversity ofMelissococcus plutonius from honeybee larvae in Japan and experimental
reproduction of European foulbrood with cultured atypical isolates. PLOS
ONE. 7, e33708.
＊4 ─ Ash C, Priest FG, Collins MD. 1993. Molecular identification of rRNA
group 3 bacilli (Ash, Farrow, Wallbanks and Collins) using a PCR probe
test. Antonie Van Leeuwenhoek. 64, 253‒260.
＊5 ─ Bailey L. 1957. The isolation and cultural characteristics of Streptococcus
pluton and further observations on Bacterium eurydice. J. Gen. Microbiol.
17, 39‒48.
＊6 ─ Bailey L. 1974. An unusual type of Streptococcus pluton from the Eastern
hive bee. J. Invertebr. Pathol. 23, 246‒247.
＊7 ─ Bailey L, Ball B. 1991. Honey bee pathology. Academic Press, London.
＊8 ─ Bailey L, Collins MD. 1982. Reclassification of Streptococcus pluton(White) in a new genus Melissococcus, as Melissococcus pluton nom. rev.;comb. nov. J. Appl. Bacteriol. 53, 215‒217.
＊9 ─ Belloy L, Imdorf A, Fries I, Forsgren E, Berthoud H, Kuhn R, CharriereJD. 2007. Spatial distribution of Melissococcus plutonius in adult honeybees collected from apiaries and colonies with and without symptoms ofEuropean foulbrood. Apidologie. 38, 136‒140.
＊10 ─ Budge GE, Shirley MDF, Jones B, Quill E, Tomkies V, Feil EJ, Brown MA,
Haynes EG. 2014. Molecular epidemiology and population structure of thehoney bee brood pathogen Melissococcus plutonius. The ISME J. 8, 1588‒
1597.
＊11 ─ Diwan VV, Kshirsagar KK, Ramana Rao AV, Raghunath D, Bhambure CS,
Godbole SH. 1971. Occurrence of a new bacterial disease of Indian honeybees Apis indica F. Curr. Sci. 40, 196‒197.
＊12 ─ Djordjevic SP, Noone K, Smith L, Hornitzky MAZ. 1998. Development ofa hemi-nested PCR assay for the specific detection of Melissococcus pluton. J.
Apic. Res. 37, 165‒174.

World. 86, 88‒101.
＊14 ─ Forsgren E. 2010. European foulbrood in honey bees. J. Invertebr. Pathol.
103, S5‒S9.
＊15 ─ Genersch E, Forsgren E, Pentikäinen J, Ashiralieva A, Rauch S, Kilwinski J,
Fries I. 2006. Reclassification of Paenibacillus larvae subsp. pulvifaciens andPaenibacillus larvae subsp. larvae as Paenibacillus larvae without subspecies
differentiation. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 56, 501‒511.
＊16 ─ Govan VA, Brözel V, Allsopp MH, Davison S. 1998. A PCR detection
method for rapid identification of Melissococcus pluton in honeybee larvae.
Appl. Environ. Microbiol. 64, 1983‒1985.
＊17 ─ Heyndrickx M, Vandemeulebroecke K, Hoste B, Janssen P, Kersters
K, de Vos P, Logan NA, Ali N, Berkeley RCW. 1996. Reclassificationof Paenibacillus ( formerly Bacillus) pulvifaciens (Nakamura 1984) Ash
et al. 1994, a later synonym of Paenibacillus ( formerly Bacillus) larvae(White, 1906) Ash et al. 1994, as a subspecies of P. larvae, with emended
descriptions of P. larvae as P. larvae subsp. larvae and P. larvae subsp.
pulvifaciens. Int. J. Syst. Bacteriol. 46, 270‒279.
＊18 ─ Hornitzky AZ, Smith L. 1998. Procedures for the culture of Melissococcus
pluton from diseased brood and bulk honey samples. J. Apic. Res. 37,
293‒294.
＊19 ─ Katznelson H. 1950. Bacillus pulvifaciens (n. sp.), an organism associatedwith powdery scale of honeybee larvae. J. Bacteriol. 59, 153‒155.
＊20 ─ McKee BA, Djordjevic SP, Goodman RD, Hornitzky MAZ. 2003. The
detection of Melissococcus pluton in honey bees (Apis mellifera) and theirproducts using a hemi-nested PCR. Apidologie. 34, 19‒27.
＊21 ─ McKee BA, Goodman RD, Hornitzky MAZ. 2004. The transmission ofEuropean foulbrood (Melissococcus plutonius) to artificially reared honey bee
larvae (Apis mellifera). J. Apicult. Res. 43, 93‒100.
＊22 ─ Rana BS, Rao KM, Chakravarty SK, Katna S. 2012. Characterization of
Melissococcus plutonius causing European foulbrood disease in Apis cerana F.
J. Apic. Res. 51, 306‒311.
＊23 ─ Roetschi A, Berthoud H, Kuhn R, Imdorf A. 2008. Infection rate based on
quantitative real-time PCR of Melissococcus plutonius, the causal agent ofEuropean foulbrood, in honeybee colonies before and after apiary sanitation.
Apidologie. 39, 362‒371.
＊24 ─ Saraithong P, Li Y, Saenphet K, Chen Z, Chantawannakul P. 2014.

養蜂技術指導手引書 Ⅱ

ミツバチの感染症：ヨーロッパ腐蛆病

21Bacterial community structure in Apis florea larvae analyzed by denaturing
gradient gel electrophoresis and 16S rRNA gene sequencing. Insect Sci. 印刷
中 doi: 10.1111/1744-7917.12155.
＊25 ─ Takamatsu D, Morinishi K, Arai R, Sakamoto A, Okura M, Osaki M. 2014.
Typing of Melissococcus plutonius isolated from European and Japanesehoneybees suggests spread of sequence types across borders and between
different Apis species. Vet. Microbiol. 171, 221‒226.
＊26 ─ Takamatsu D, Okura M, Yoshiyama M, Wu M, Arai R, Morinaga Y. 2012.
Detection of atypical Melissococcus plutonius in honeybees. Vet Rec. 171,630.
＊27 ─ Tomkies V, Flint J, Johnson G, Waite R, Wilkins S, Danks C, Watkins
M, Cuthbertson AGS, Carpana E, Marris G, Budge G, Brown MA. 2009.
Development and validation of a novel field test kit for European foulbrood.
Apidologie. 40, 63‒72.
＊28 ─ Truper HG, dé Clari L. 1998. Taxonomic note: erratum and correction offurther specific epithets formed as sustantives (nouns) in apposiotion. Int. J.
Syst. Bacteriol. 48, 615.
＊29 ─ White GF. 1906. The bacteria of the apiary with special reference to bee
disease. USDA, Bureau of Entomology, Technical Series. 14, 1‒50.
＊30 ─ White GF. 1912. The cause of European foulbrood. US Department ofAgriculture Bureau of Entomology circular no. 157. US Department ofAgriculture, Washington, DC.
＊31 ─ Zhou T, Feng F, Dong B. 2000. Study on the pathogen of European
foulbrood in the Chinese honey bee (Apis cevana cevana F). Acta Entomol.
Sinica 43, 104‒108.

22

養蜂技術指導手引書 Ⅱ

養蜂技術指導手引書 Ⅱ

ミツバチの感染症

ヨーロッパ腐蛆病
平成27年9月発行

発行所

一般社団法人 日本養蜂協会〒104-0033 東京都中央区新川2丁目6-16 馬事畜産会館6階

著者

髙松大輔
国立研究開発法人農業・食品産業技術総合研究機構
動物衛生研究所 細菌・寄生虫研究領域

芳山三喜雄
国立研究開発法人農業・食品産業技術総合研究機構
畜産草地研究所 家畜育種繁殖研究領域

荒井理恵
埼玉県農林部畜産安全課【非売品】