(文部科学省「教育関係共同利用拠点事業」)

平成 29 年度 教育関係共同利用拠点事業報告書(拠点名) 食糧基地 北海道の水圏環境を学ぶ体験型
教育共同利用拠点–多様な水産資源を育む環境でのフィールド教育-

北海道大学 北方生物圏フィールド科学センター
臼尻水産実験所、七飯淡水実験所、忍路臨海実験所
平成 30 年 6 月




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2-4 公開水産科学実習
本拠点では、① 水圏フィールド環境・生物のモニタリング実習、② 水圏生物の行動解析実習、③ 亜寒帯魚類を対象とした増養殖実習、④ 亜寒帯の沿岸生物の増養殖実習、⑤ 水圏における環境と人間活動の共生に関する実習、の５つの実習のうち②を除く４つの実習を行った。
水産系の拠点では、本拠点の３施設の他、洞爺臨湖実験所と函館海洋センターの生態系変動解析
分野に所属する教員が実習を担当した。これらの実施状況はいかに示す通りである。

2-4-1

水圏フィールド環境・生物のモニタリング実習

本実習は、「バイオロギング実習」という名前で行った。その実習の趣旨は、「地球環境の変化に伴って生物資源の定量調査や生態調査は増加しているが，水中の生物の移動や消長は，陸上から測定することは困難であった。現代においては調査技術の進歩が著しく進み，様々な機器を用いることで可視化することが可能である。本実習では，バイオロギングとバイオテレメトリー技術を用い，水中生物の分布と消長,水中の生物の動きをモニタリングする基礎を学ぶ」ことにある。

(1)開催日：2017 年 9 月 12-15 日（３泊４日）(2)開催場所：臼尻水産実験所，函館国際水産海洋センター(3)対象者・受講者・参加大学

大学名

学年

1 長崎大学2年

2 長崎大学

2年

3 京都大学

4年

4 京都大学

3年

5 京都大学3年

6 帯広畜産大学

1年

7 東京農工大学

4年

8 東京農工大学

1年

9 琉球大学

1年

10 公立はこだて未来大学

4年

11 公立はこだて未来大学

3年

12 北里大学2年

13 北海道大学

1年

14 北海道大学

修１年

4

氏名

対象者として、主に水産学や水圏生物学の学修を希望する 3 年生及び 4 年生とした。今回は本公
募には、単位を認定できないが受講を希望した大学院生を受け入れた。
(4)受講生の負担金額：9,000 円（食事代、臼尻水産実験所での宿泊代を含む）(5)実習内容：(6) 実習風景

講義の様子

バイオロギング取り扱い講習5受講生によるロガー装着個体の放流

データロガーを装着したアカウミガメ

データロガーを装着したブリ

七飯淡水実験所施設見学

取得データの解析

発表会の様子

受講生との集合写真

解散時の受講生の様子

6

(7) 成績評価
成績評価は、1. 各講義のレポートと 2. データ解析レポートの提出、3. 解析結果の発表スラ
イドの作成および発表の 3 点で評価した。
1. 講義レポート
講義ごとに学んだことおよび感想を記述。
2. 研究解析レポート
エクセルによるデータの数値計算および図表の作成。
論文形式(目的・材料と方法・結果・考察)で、写真・図表をまじえたレポートの作成。
3. 解析結果の発表
2.をもとに、パワーポイントで解析結果の発表スライドを作成し、1 人 15 分の成果発表と質疑応答。
(8) 受講生によるアンケート評価（受講者数：14 名）【Ｑ１．所属大学】
北海道大学：1 名、他大学：１１名、未記入：２名【Ｑ２．実習の情報入手源】
ガイドやポスター：８名、教員のアドバイス：２名、その他：４名＜その他の内容＞
友人の勧め／フェイスブック／学部のＨＰ／大学掲示板【Ｑ３．公開実習に期待したもの】
項目１：他大学の授業を受けることに意義がある
項目２：他大学の学生と交流できる
項目３：他大学についての情報が得られる
項目４：自大学に開講されていない授業を履修できる
項目５：自大学にも開講されているが，反復履修できる
項目６：異なる自然環境，生物に接することができる
項目７：旅行と単位取得が同時にできる
項目８：その他（将来へのきっかけ)【Ｑ４．実施期日・季節・期間について】
Q4-1.実施期日

Q4-2.実施季節

7

Q4-3.実施期間

【Ｑ７．告知方法に関して】
Q7-1. ポスターやガイド一覧表を見たか

Q7-2. このような情報は有意義か【Ｑ５．今回受講した実験所の実験設備や実験器具について】
１．実習室は整備されていたか
２．実習器具は充実していたか
３．実習環境は良好であったか
４．採集・飼育設備は充実していたか
５．実習船舶は整備されていたか（該当せず）【Ｑ６.宿泊について】
１．宿泊生活は快適だったか
２．宿泊室は整備されていたか
３．寝具は清潔であったか
４．経費は適当であったか
５．実食事内容は適当であったか＜６．宿泊についての問題点または要望事項＞
・ボディソープとシャンプーがあると良い。
・宿泊所で自由に話ができるようにして頂きたいです。

【Ｑ８．今回受講した公開実習を選択した理由】
・ 以前から「バイオロギング」をやってみたいと考えていたから。
・ 興味のある内容であったため。
・ ポスターでアザラシの写真がのっていて一目ぼれしたのが最初でした。バイオロギングにも興味があったし、行動力学やデータ解析などほかにも自分の興味と一致することがたくさんだったので、テンションアゲアゲで応募しました
・ 生物バイオロギングに興味があったから。

8

・ 友人に誘われて、ヒマだったので来た。大学院に北大を考えているので見てみたかった。バイオロギングにはそこまで興味がなかった。
・ バイオロギングを学び、将来に役立てるため。
・ バイオロギングを用いた研究をしたいと思っていたから。
・ 他専攻を体験してみたかったため。
・ 普段触れることのない水産学の講義に興味をもったから・ 生活を送る中では体験できない経験をすることができると思いました。実際にもそのとおりで、大変有意義でした。
・ バイオロギングに興味があったため。
・ 今後に役立つから。
・ バイオロギングに興味があった。北大の実習を受けてみたかった。

【Ｑ９．受入大学での実習参加の手続きにおける問題】
・ 書類が面倒だ・ もう少し早く受入許可を知らせてほしい。
・ 手続きに時間がかかった。

【Ｑ１０．所属大学での実習参加の手続きにおける問題】
・ スマートフォンで書類をみたところ、内容ぬけがあり、ノートパソコンでみてそのねけに気づき、期限切れになりかかったということがありました。

【Ｑ１１．当実験所の HP にアクセスしたことがあり、内容についての意見があれば】
なし【Ｑ１２．受講後の感想】
・ 自らの手で実験を進められた上、対象となった生物種も自分の興味のあったものであったため、この実習はとても価値あるものでした。ありがとうございました。

・ 参加できて本当に良かったです。
・ とにかく楽しかったです！！こんなに楽しいとは思ってもみませんでした。本来の目的、バイオロギン
グ取扱いを学ぶこと、データ解析を学ぶことは十分にはたせたし、そ以外の場所でも、他大学の他学年の人とたくさん話ができたのが新鮮だし、すっごく笑ったし、たのしすぎました。ＢＢＱごちそうさまでした！！

・ 普段とは異なる環境で、やりたいことをやれて、とても充実した４日間でした。
・ 参加する前は、実習の後に遊ぶことしか楽しみがなかったが、終わってみたらとても楽しかった。他大学の人と話すのがこんなに楽しいとは思わなかった。また機会があれば行きたいです。

9

・ 普通では体験できないロガーの取付やデータの解析ができて良かった。他大学の人や研究室の人とお話ができて有意義だった。
・ すごくためになりました！観光や名物も食べられて楽しかったです。
・ 様々な面で満足しました。しかし、実験内容について受講者で決定できるようにしてもよいかと思います。
・ 魚にセンサを取り付ける所から、データを解析する所まで、一通りのプロセスを体験できて非常に充実していた。また、他大学の学生との交流も楽しかった。
・ とても有意義な実習生活を送ることができました。ありがとうございました。
・ とても有意義だった。バイオロギングの手法も学ぶことができた上に先生やＴＡさんも良い人
ばっかで楽しかった。

【Ｑ１３．受講料が１万円―１万５千円だと受講したか】【Ｑ１４．受講料についての意見】・ こんなに安くて大丈夫ですか？
・ 適切である。
・ 安くてありがたかった。交通費が高かったので、もう少し高かったら考えていたと思う。

【Ｑ１５．公開実習についての希望や意見】・ 食品系でもできればやってほしいです。
・ これからも続けてほしい。

・ 自分の大学にはない実習に参加でき、設備も使用でき良かった。他大学の人の話が刺激になり、良い体験だった。ありがとうございました。

10

2-4-2亜寒帯魚類を対象とした増養殖実習

本実習は、「応用発生工学実習」という一般名称で行った。その実習の趣旨は、「水産育種技術として発展している染色体操作、ゲノム編集や遺伝子改変の基本技術としての発生工学に関する実習を魚類を材料として行い、その背景となる理論を教授する」とするものである。このプログラムでは、水産海洋実践ネットワークの実習の一部として、長崎大学の征矢野清教授の参画のもと「魚類の生殖腺の構造と発達」に関する、講義および実習を含めた。

(1)開催日：2018 年 2 月 26 日-3 月 2 日（4 泊５日）
(2)開催場所：七飯淡水実験所、（臼尻水産実験所

宿泊）(3)対象者・受講者・参加大学

大学名

学年

1

広島大学

２年

2

東京農業大学

２年

3

北里大学

２年

4

北里大学

２年

5

京都大学

２年

6

北里大学

２年

7

北里大学

２年

氏名

本公募では、対象者として主に水産学や生物学に興味のある学生を求めた。定員 10 名に対し 8名の応募が有ったが、後に辞退があったため 7 名となった。本年度は、七飯淡水実験所に配属された学生の都合が合わなかったため、北大生と実習を通じた交流を行うことができなかった。しかしながら、TA として北大の４年目学生、修士の学生を配置し、北大の風土等を理解させるように努めた。

(4)受講生の負担金額：8,000 円（食事代、臼尻水産実験所での宿泊代を含む）(5)実習内容：
実験所教員による、魚類の発生工学全般の講義・実習を行うとともに、水産実践教育の実習として４日目の午後に長崎大学 征矢野清先生による講義と実習を行った。

11

(6)実習風景：

飼育サケマスの飼育によるサケマス

長崎大征矢野教授（右から 2 番目）に種類と特性の説明

形態異常の説明よる卵巣細胞の解析実験

12ガラス器具作成の様子

参加者とスタッフ(7)成績評価：
以下のテーマを与え、実験の過程でレポートをまとめさせ、提出させた。
(1) 一日目①

発生工学の可能性をどう捉えたか。

②

ガラスを細工する「こつ」とは何であると感じたか。

(2) 二日目①

ゼブラフィッシュ、サケマスの良質な卵とはどういうものと考えるか。

②

顕微注射の「こつ」はどこにあると考えるか。

③

染色体操作がうまくいったかをなるべく早く知るためにどのようにすれば良いと考えるか。

④

精子以外の細胞を凍らせて解凍した時に「生きている」ことを知るためにはどうすれば良いか。

(3) 三日目①

キンギョとゼブラフィッシュの卵の違いは何であると感じたか。その違いは何が原因で生じると考えるか。遺伝子発現以降の原因を考えよ。

②

卵黄を切る、胚盤を移植するなどの胚を操作するときに最も重要と考える手順はどこであると感じたか。それを向上させるための手段は何と考えるか。

③

細胞が分裂するところを思い出し、文章化してみなさい。

(4) 四日目①

北海道栽培漁業公社伊達事業所で考えたことは何か。まとめてみよ。

②

北海道大学北方生物圏フィールド科学センター洞爺臨湖実験所で考えたことは何か。
まとめてみよ。

(5) 五日目①

実験室の中での発生と自然界の営みの中での発生の違いをどう考えるか。文章化してみなさい。

②

自分の生活と研究を両立させるために何が必要だと感じましたか。

(8)受講生によるアンケート評価（受講者数：7 名）

13

【Ｑ１．所属大学】
北海道大学：０％、他大学：１００％【Ｑ２．実習の情報入手源】
ガイドやポスター：1 名、教員のアドバイス：5 名、学内のお知らせ：1 名【Ｑ３．公開実習に期待したもの】
項目１：他大学の授業を受けることに意義がある
項目２：他大学の学生と交流できる
項目３：他大学についての情報が得られる
項目４：自大学に開講されていない授業を履修できる
項目５：自大学にも開講されているが，反復履修できる
項目６：異なる自然環境，生物に接することができる
項目７：旅行と単位取得が同時にできる
項目８：その他（将来へのきっかけ）【Ｑ４．実施期日・季節・期間について】
Q4-1.実施期日

Q4-2.実施季節

14

Q4-3.実施期間

【Ｑ５．今回受講した実験所の実験設備や実験器具について】
１．実習室は整備されていたか
２．実習器具は充実していたか
３．実習環境は良好であったか
４．採集・飼育設備は充実していたか
５．実習船舶は整備されていたか（該当せず）【Ｑ６.宿泊について】
１．宿泊生活は快適だったか
２．宿泊室は整備されていたか
３．寝具は清潔であったか
４．経費は適当であったか
５．食事内容は適当であったか＜６．宿泊についての問題点または要望事項＞
・宿泊施設が遠いのは仕方がないことだけれども、往復の運転を先生だけがするのは負担が大きすぎると感じました。

【Ｑ７．告知方法に関して】
Q7-1. ポスターやガイド一覧表を見Q7-2. このような情報は有意義か【Ｑ８．今回受講した公開実習を選択した理由】
・ キメラを作ることに興味があり、また所属大学では実験器具がそろっていないからです。
・ インジェクション技術、発生工学を深く学ぶため。
・ 北海道という土地への憧れ。
・ 自身は遺伝子工学に興味があったが専門にしようとは思っていなかったので、体験したかった。
・ 実習は座学では学べない“生の”情報を多く学べるから。
・ 増養殖に興味があり、その基本となる発生について学べると思い参加した。また、行った事のない土地での水産分野についても知りたかったから。

15

・ 北海道に行ったことがなくて、ずっと行きたかったから。
・ 自分は水産系に興味がないのかな、と思って心配になってたから。
・ 最近、自分が将来本当にしたいことは何なのか、生物は向いてないんじゃないかと思っていた
時、顕微鏡をのぞきながら小さい卵を切って移植する技術があることを知り、興味を持ったから、この実習に参加しました。

【Ｑ９．受入大学での実習参加の手続きにおける問題】
・顔写真を添付する必要性が分からない。学生証のコピーではダメなのか？

【Ｑ１０．所属大学での実習参加の手続きにおける問題】
・申込締切（京大農学部窓口）がはやすぎる。学生が参加しにくい理由の一つでは？

【Ｑ１１．当実験所の HP にアクセスしたことがあり、内容についての意見があれば】
なし【Ｑ１２．受講後の感想】
・ 難しい技術ではあったが、所属大学では今までにしたことがなく、よい経験をさせてもらったと思います。教員の方々やＴＡさんにも生活の事などで色々お世話になりました。とても感謝しています。
・ 実習内容がとても良かった。所属大学の実験では行えないことだらけで非常に勉強になった。先生やＴ
Ａひとりあたりの学生数が少なかったので、気になったことが直ぐに質問できて理解を深めるのに最高の環境だった。他大学の学生との交流によって学ぶこともたくさんあった。また、同じ水産学に身を置く同年齢のつながりができたことで、これから先にも続く良い体験になった。
・ 楽しく学べて（予定よりはるかに）最高の 5 日間でした。山羽先生・ＴＡの皆様にこの場を借りてお礼申し上げます。ありがとうございました。インジェクション、移植の技術は一通り取得できました。ただ練習がかなり必要ですので頑張ります。
・ 山羽教官が本当にいい人で、学生のことを第一に考えていて下さって本当に充実した 5 日間を過ごすことができました。本当に有難うございました。新たな技術（mRNA などのインジェクション）を学んだ時の喜びは初めての経験で忘れられないものとなりました。
・ 実習において、技術を学ぶことはもちろんだが、実験、観察での考察の仕方や手順を自分なりに工夫す
るということを学べた実習だった。この経験は、これから研究していく私にとって、刺激となり、何をするにしても大切な力になった。そして、この実習期間のみならず、自大学に帰ってからも意識して、「自分で考える」ということをしていこうと思った。
・ 授業で奥村先生が見せてくださった移植の動画を見て興味を少し持ち、それが北海道だったからという理由で参加した。しかし、5 日間が終わってみると、水産分野の面白さがわかってきて、発生生物学でも16

自分ができることはあるかもしれないと思えるようになった。この実習はＴＡさんや先生方の支えのもとになりたっていると強く感じた。他大学の人との交流も本当に良い刺激になった。

・

最初はカチカチの実習なのかなと不安でしたが本当に良い先生やＴＡさん方、受講生でとても気楽に楽しくできて良かったです。

【Ｑ１３．受講料が１万円―１万５千円だと受講したか】【Ｑ１４．受講料についての意見】
・ 適切な金額だと思います。
・ お金がかかるなら、全ての実習がそうでないなら、この実習はとらないと思う。他の実習がタダならそちらにいく。
・ 遠い所に行くのには交通費等がかかるので、受講料が必要だったら、本当に興味がある実習にしか参加しなくなると思う。実費だけなら気軽に参加できる。
・ 実習費が 8000 円だったのはものすごく安いなとは思いましたが、プラスで 1 万～1 万 5 千円となると何とも言えません。というのも、北海道に来るのも結構交通費がかかるからです。ただ、この実習の質を考えると、受講料はあるべきだとは思いました。それだけの知識や技術が得られると思います。

【Ｑ１５．公開実習についての希望や意見】・ 興味があるのに日程が被っているため参加できない実習があったため、日程をずらすと参加する人が少し増えるのではと考えた。
・ 1 単位しか出ずに 3 泊 4 日はもったいないので、5 泊 6 日でもいいので 2 単位にしてほしい。短い期
間だと全ては伝えられないし、学べないと思います。
・ 今の量が良い。

・ 実習期間を長くしてほしい。

17

2-4-3

水圏における環境と人間活動の共生に関する実習

本実習は、「海棲哺乳類実習」という名称で行った。その内容は、「漁業と海棲哺乳類との競合が問題となっている北海道沿岸において，海棲哺乳類の行動を観察し、繁殖生態や回遊などの実態を学び、人との共存を考える」とするものである。

(1)開催日：2018 年 3 月 5‐8 日(2)開催場所：忍路臨海実験所、小樽水族館(3)受講者・参加大学
本公募には、定員 10 名に対し学外から 21 名，学内から 2 名の応募が有り、応募理由および所属大学での単位認定の可否の可能性を元に 10 名を選抜した。

大学名

学年

1

京都大学

３年

2

名古屋大学

１年

3

立正大学

２年

4

帯広畜産大学４年

5帯広畜産大学

１年

6

京都大学

３年

7

長崎大学

３年

8

琉球大学

１年

9

東京農工大学

１年

10

東北大学

２年

(4) 受講生の負担金額：5,100 円（食事代、忍路臨海実験所の雑費含む）(5）実習内容：

18

氏名

(6) 演習風景

講義の様子

アザラシの行動観察

田島博士による講義

観察対象のアゴヒゲアザラシ

ディベートの様子

19

集合写真＠おたる水族館

(7) 成績評価
１日目 各講義で学んだこと，および感想
２日目(1) 自分が選択した行動の観察方法および記録方法を書き，それを選んだ理由を書く．
(2) 行動の観察および記録で難しかった点(3) 行動観察から発見したことを書く．
(4) 講義で学んだこと，および感想(5) 飼育員さんのお話で学んだこと，および感想(6) ディベートの課題について，自分の意見をまとめる
３日目(1) データロガーのデータ解析について，このデータから言えることは何かを書く．
(2) 胃内容物分析について学んだこと，及び感想．
(3) 一致個体はどれとどれだったかを書く．識別に用いた特徴も述べる．
４日目:作成したプレゼンの内容をそのままレポートとして書く。
(1) 目的(2) 材料と方法(3) 結果(写真やグラフの図を貼る)(4) 考察(5) 学んだ事および感想(8) 受講生によるアンケート評価【Ｑ１．所属大学】
北海道大学：０％、他大学：１００％【Ｑ２．実習の情報入手源】
ガイドやポスター：５名、教員のアドバイス：１名、その他：４名＜その他の内容＞
京大のホームページ／前回のバイオロギング実習での告知／大学の Web 掲示板【Ｑ３．公開実習に期待したもの】
項目１：他大学の授業を受けることに意義がある
項目２：他大学の学生と交流できる
項目３：他大学についての情報が得られる
項目４：自大学に開講されていない授業を履修できる
項目５：自大学にも開講されているが，反復履修できる
項目６：異なる自然環境，生物に接することができる
項目７：旅行と単位取得が同時にできる【Ｑ４．実施期日・季節・期間について】
Q4-1.実施期日

Q4-2.実施季節

20

Q4-3.実施期間

【Ｑ５．今回受講した実験所の実験設備や実験器具について】
１．実習室は整備されていたか
２．実習器具は充実していたか
３．実習環境は良好であったか
４．採集・飼育設備は充実していたか（該当せず）
５．実習船舶は整備されていたか（該当せず）＜６．その他のコメント＞
・寒い【Ｑ６.宿泊について】
１．宿泊生活は快適だったか
２．宿泊室は整備されていたか
３．寝具は清潔であったか
４．経費は適当であったか
５．実食事内容は適当であったか＜６．宿泊についての問題点または要望事項＞
・寒い。
・シーツ等のサイズが小さくて使い方が正しかったか分からなかった。
【Ｑ７．告知方法に関して】
Q7-1. ポスターやガイド一覧表を見たか

Q7-2. このような情報は有意義か【Ｑ８．今回受講した公開実習を選択した理由】
・ 海棲哺乳類が好きで、所属大学では学ぶことができない内容を学べそうだったので。
・ 私は今陸上の哺乳類についての研究室に所属しているのですが、元々海洋の哺乳類について興味がありました。又、来進化について何らかの研究がしたいという思いがあり、その点では海洋環境が大切であると感じていたため、海洋の哺乳類の研究について知りたいと思いました。
・ 海棲哺乳類について実習経験がなく、興味がわいたから。
・ 興味のある分野であり、北大の先生の講義をうけたいと思ったから。自分の大学ではなかなか学べないことについて知りたかった。また、他大学の学生さんと交流したかった。
・ 新しい知識を得たかった。

21

・ 北大のバイオロギング実習がたのしかったので、また北海道いこう！と思いました。他大の人と話すのがためにはなるし、たのしいから。
・ 海棲哺乳類は琉大では学べないから、実践的なことを学べると思ったから。
・ バイオロギングに興味があったから。

【Ｑ９．受入大学での実習参加の手続きにおける問題】
・証明写真の必要性【Ｑ１０．所属大学での実習参加の手続きにおける問題】
・大学への手続き、説明がめんどうであった。
・審査に通ったのか否かを教えてもらえなかった。

【Ｑ１１．当実験所の HP にアクセスしたことがあり、内容についての意見があれば】
・Youtube で実習内容を挙げていてよかった。

【Ｑ１２．受講後の感想】
・ 様々な知識を吸収できた。有意義な実習に出来てよかった。
・ 今まで聞いたことがないお話をたくさん伺うことができて大変勉強になりました。基本的な知識が少な
いだけでなく、Excel 等を始めとした分析機器・手法についても知らないことや使いこなせていないといった課題が見つかったので、今後の勉強に生かしたいです。他大学の学生と交流ができると共にふだんできない経験もできるから。
・ 四日間でしたがとても楽しかったです。また、普段経験することができないことができてよかったです。
・ とても楽しかった。内容もとても充実しており、主に鰭脚類についての理解が深まった。
・ 自分の大学ではきくことができない専門的な内容の講義で、とてもおもしろかった。です。また、鳴音解析など研究手法の体験もできて有意義な時間だったと思います。他にも与えられたテーマについて自分の考えを述べるディベートや、行動観察で自分が記録をとったことについて発表する時間があり、自分の意見を主張するためにはたくさんのことを調べてみんなに納得してもらえるようにしなくてはいけ
ないと分かりました。他の学生さんの意見も聞けて良かったです。
・ 興味深く楽しかったです。
・ すごくすごくすごくたのしかったです。ありがとうございました。本当にこの実習は、バイオロギ

ングのときもでしたが、たった数日で日常の何百‐千倍もよい経験が得られるので、ただただサイコーです。三谷先生が学生時代にしたかったことを、ということでしたが、もう本当にすばらしいです。こんな機会がいただけてありがたいです。

22

・ 「自分の実力不足」を痛感しました。ディベートで相手を納得する能力だったり、夢に向かって新しい事を調べる姿勢だったり、自ら進んで作業を行う気配りだったりと、他の学生達から見習うべ
きところが多くありました。
・ 非常に有意義な実習だった。もう少し、どの視点で行動観察をするか指南（特に僕は勉強不足で知識がなかった）して欲しかったです。行動観察方法の資料はいただいたが、実例がなくイメージしずらかったです。

【Ｑ１３．受講料が１万円―１万５千円だと受講したか】【Ｑ１４．受講料についての意見】・ 受講料が高いと交通費もかかるので厳しい。それでも受けたい興味がある内容であれば少し考えると思う。
・ 満足です。
・ 今のままでよい【Ｑ１５．公開実習についての希望や意見】
・ なし

23

2-4-4

亜寒帯の沿岸生物の増養殖実習

本実習は、「春期フィールド科学実習」という名称で行った。その内容は、「コンブの多様性の遺伝子解析と養殖視察、北方系海棲魚類を対象とした人工授精と産卵生態の観察を行うとともに、その背景となる理論を教授する」とするものである。
(1)開催日：2018 年 3 月 12-16 日(2)開催場所：忍路臨海実験所、洞爺臨湖実験所、臼尻水産実験所(3)受講者・参加大学
大学名学年

1 東京農業大学

２年

2 東京農業大学

２年

3 東京農業大学

２年

4 広島大学２年

5 東京農業大学

２年

6 東京農業大学

２年

氏名(4)受講生の負担金額：9,000 円（含：食事代、忍路臨海実験所と臼尻水産実験所での宿泊代）(5)実習内容：
・忍路臨海実験所および臼尻水産実験所において,コンブ類を対象とした生態調査,遺伝子解析,昆布養殖現場の視察（2 日間）（指導教員：四ツ倉典滋,傳法隆）
・臼尻水産実験所において,北方系海産魚類を対象とした人工授精とシュノーケリングによる生態観察（2 日間）（指導教員：宗原弘幸）

24

(6)実習風景：

コンブ藻場の調査（忍路）臼尻の施設紹介

採集海藻の標本作成（忍路）

潜水実習の様子（臼尻）コンブの遺伝子抽出（忍路）集合写真（臼尻）(7)成績評価：
前半後半に分け、以下のテーマについてレポートを提出させ、評価を行った。
前半：コンブの増養殖＊

今回、天然コンブの海洋生態系における役割を理解し、またコンブが北海道産の主要な水産物として我々日本人とも深く関わっていることが分かった。北海道沿岸のコンブを取り巻く状況が厳しくなるなかで、コンブの群落を守り、コンブ産業をより発展させるために私たちはどんなことをするべきか。各自の考えを具体的に述べなさい。
後半：まるごとホテイウオ、人工授精から産卵観察、調理まで２日間通じて経験し、学習できたことを A４用紙 1〜2 枚にまとめさせ、主に理解の正確性について評価した。

(8)受講生によるアンケート評価（受講者数：６名）【Ｑ１．所属大学】
北海道大学：０％、他大学：１００％【Ｑ２．実習の情報入手源】
ガイドやポスター：1 名、教員のアドバイス：4 名、先輩に勧められた：1 名【Ｑ３．公開実習に期待したもの】

25

項目３：他大学についての情報が得られる
項目４：自大学に開講されていない授業を履修できる
項目５：自大学にも開講されているが，反復履修できる
項目６：異なる自然環境，生物に接することができる
項目７：旅行と単位取得が同時にできる
項目８：その他

項目１：他大学の授業を受けることに意義がある
項目２：他大学の学生と交流できる【Ｑ４．実施期日・季節・期間について】
Q4-1.実施期日

Q4-2.実施季節

Q4-3.実施期間【Ｑ５．今回受講した実験所の実験設備や実験器具について】
１．実習室は整備されていたか
２．実習器具は充実していたか
３．実習環境は良好であったか
４．採集・飼育設備は充実していたか
５．実習船舶は整備されていたか（該当せず）＜６．その他のコメント＞
・ウェダーなどの防水器具に穴が空いていた【Ｑ６.宿泊について】
１．宿泊生活は快適だったか
２．宿泊室は整備されていたか
３．寝具は清潔であったか
４．経費は適当であったか
５．実食事内容は適当であったか

26

＜６．宿泊についての問題点または要望事項＞
・逆に良すぎて遠慮してしまった。

【Ｑ７．告知方法に関して】
Q7-1. ポスターやガイド一覧表を見たか

Q7-2.このような情報は有意義か【Ｑ８．今回受講した公開実習を選択した理由】
・ 時期がちょうどよく、シュノーケリングができたので。
・ 北海道にいるときにできることをしたい、という思いで選択しました。
・ パンフレットでの楽しそうな様子から。
・ 春休みということで、受講しやすい日程であったため。また、道南の海を知るいいきっかけになると思ったため。
・ 実習内容の分野に興味があった。初めての土地に行くことができることや冬の海をシュノーケ
リング体験ができ単位を取得できるから。

【Ｑ９．受入大学での実習参加の手続きにおける問題】
・もっと前の時期に募集をしてくれたらいいなと思う。
・大学事務員との話に齟齬があったので受付がスムーズに済みませんでした。

【Ｑ１０．所属大学での実習参加の手続きにおける問題】なし【Ｑ１１．当実験所の HP にアクセスしたことがあり、内容についての意見があれば】
・他にも色々な実習を行っていた。
・もっと写真がみたかった（実習の）27【Ｑ１２．受講後の感想】
・ 本当に受講してよかったと思う。想像よりもとても良い実習だった。
・ 思っていたよりも、かなりのまんぞく感をえることができました。また参加したいです。
・ 海藻に今まで強い関心はなかったのですが、直接目で見て、講義を通して、海藻の役割や現状の認識をすることで、海藻の分野の面白さを知ることができた。
・ 魚卵を詳しく掘り下げて観察を行ったことがなかったため、良い機会になりました。シュノー
ケリングすごく楽しかったです。
・ 食事がとても良かった。
・ 実習時間外の時間が多かったので、夜間も何か実習をしても良いと思った。
・ 先生方や先輩方が非常にやさしく勉強以外の点でも学ぶことができた。他大学の生徒がいたこともあり様々な情報を交換できた。北海道に住んで 2 年経つが、住んでいる場所の海の状況を知らなかった。また食卓にならんでいる食べ物に生活史についてドラマがあるというのを知れたので、とてもよい経験になった。

【Ｑ１３．受講料が１万円―１万５千円だと受講したか】【Ｑ１４．受講料についての意見】
・ 学べることや体験できることが多いので、受講料があってもいいと思う。交通費などもかかるのでそれも込みでいいと思う。
・ 9000 円にしては良すぎると言っていいほどの待遇で実習に参加させて頂けました。
・ 盛りだくさんの内容で￥9,000 はすごいと思いました。
・ あまり高くない（1 万円～）方が良いと思うので、今回は適切（9000 円）だと思った。

【Ｑ１５．公開実習についての希望や意見】・ 自分たちで魚や海藻を獲ってたべてみたい。
・ 細かいタイムスケジュールがじぜんにわかっていたらよかったなぁと思います。
・ 宿泊施設の写真などがどこかで見ることができたらよかったかもしれません。
・ 食事がお弁当が多かったので、できるだけ外食でなく手作りのものが食べたかったです（栄養的に）・ 他大学の公開実習と連携させるとより良いと思った。例えば、長崎、北海道大学で行った発生学の実習のように２つの実習をとることで、深い理解につながるような実習は良いと
思った。

28

2-4−6 その他特色ある取組(1) 水産学部サマーインスティテュートへの参画
北海道大学のスーパーグローバル事業として行っている Summer Institute のうち、水産学部が 8 月 13 から 29 日に開講したプログラムの一部に参画した。このプログラム
では、カセサート大学（タイ王国）から６名と華中農業大学（中華人民共和国）から２
名、北海道大学から２名の学生の他、一部のプログラムには 7 名の高校生も参加した。
七飯淡水実験所では、フィールドで飼育されているサケマス類の説明を行った後、日本産フナの集団解析という実習題目のもと、実験材料の二〜四倍体フナから採取した血液の相対的な DNA 量解析や、鱗移植によるクローン手段の解析を行った。
臼尻水産実験所では、シュノーケリングや地引き網を体験するとともに、フィールドあるいは定置網で採取した魚種の分類学的な査定の指導を行った。

日付

実施学部

提供題目

利用施設

利用人数（人日）

8 月 16 日

水産学部

日本産フナの集団解析

七飯淡水実験所10

8 月 19-20 日

水産学部

魚類の分類学的な査定

臼尻水産実験所34

シュノーケリング練習（臼尻）

シュノーケリングによる生物観察（臼尻）講義と観察と料理指導（臼尻）29イトウの説明（七飯）サクラマスからの精子の採集（七飯）FCM による相対 DNA 量の測定（左）（七飯）

フナ個体での鱗の移植（右）（七飯）(2) 水産海洋実践ネットワーク協定での事業本拠点では、平成 28 年３月に締結された、京都大学、広島大学、長崎大学と北海道大学との間の「海洋実践教育ネットワーク協定」に基づき、協定大学との間で教員を参画させ文部科学省の教育拠点大学としての機能を高めてきた。平成 29 年度は、以下の２つの事業を行った。
1) 長崎大学 公開臨海実習「水産海洋環境学実習Ⅰ（B 日程）」への参画
北海道大学から七飯淡水実験所の山羽悦郎教授が平成 30 年 3 月 8 日に長崎大学の公開
臨海実習「水産海洋環境学実習Ⅰ」に赴き、魚類の発生工学の講義を行うとともに、北海
道から運搬したカットスロートトラウトの卵と精子を材料とした、サケ科魚類の受精実験、精子の凍結実習、および受精卵への蛍光色素（FITC）の顕微注入の実習を行った。長崎大学の水産海洋環境学実習では、水産増養殖魚類の卵形成に焦点を当て、卵の成長から最終成熟に焦点を当てた実習を行っている。一方、北海道大学では、最終成熟後の受精および発生に焦点を当てて実習を行っている。二つの実習が組合わさることにより、受講生に対して種苗生産から育種に至る幅広い知識が与えられることになる。

30

遺伝子資源の保存に関する講義
精子の凍結の実習

ニジマス卵への顕微注入の実習

2)広島大学 竹原ステーションからの参画
前述の「海洋実践教育ネットワーク協定」に基づき広島大学 竹原ステーションの加藤亜記准教授を、本拠点の「春期フィールド科学実習」へ招聘し、実習に参画していただいた。実習では、初日に忍路臨海実験所の四ツ倉准教授が磯焼け海域のコンブ藻場について説明した後、野外フィールドへ出て、海域に広がる紅藻サンゴモの分類や生態、そしてコンブ藻場内に生育する海藻について解説をしていただいた。その後は、実験室において、海藻の生育に及ぼす環境の影響などについて広島周辺の状況を交えた授業を、次いで、組織切片の観察や標本づくりの指導をしていただいた。受講生は、コンブ藻場内海藻の多様性や、藻場の衰退や消失に関わるサンゴモについて深く理解ができ、実習二日目以降のコンブに関する実習を進めるうえで有益な知見が得られたようである。

海藻の多様性に関する講義風景（忍路）

サンゴモの生態の解説風景（忍路）312-4-7. 共同利用教育

開始
日

終了日

利
用
日
数

教
員

院
生

学
部
生

他

利
用
人
数

人日

忍路

8/14

8/18

5

2

0

7

0

9

45

棘皮動物の発生過程観察と磯の生態系観察

忍路

9/6

9/8

3

2

0

10

0

12

36

北方生物
圏フィー
ルド科学
センター

公開水産科学実習１（水圏フィールド環境
生物のモニタリング実習）

臼尻

9/4

9/7

4

2

1

12

1

12

48

悦郎

北方生物
圏フィー
ルド科学
センター

公開水産科学実習 2（応用発生工学実習）

七飯
臼尻

2/26

3/2

5

1

0

7

0

7

35

四ツ倉 典滋

北方生物
圏フィー
ルド科学
センター

公開水産科学実習 3（沿岸生物の増養殖実習）

忍路
臼尻

3/12

3/16

5

3

0

6

0

6

30

三谷

北方生物
圏フィー
ルド科学
センター

公開水産科学実習 4（海棲哺乳類実習）

忍路

3/5

3/8

4

1

0

10

0

10

40

26

11

56

234

利用
日数

利用
人数

人日

番
号

申請者氏名

所属

実習名

利用
施設

1

高久

元

北海道教
育大学札
幌校

臨海実習

2

干場

敏博

酪農学園
大学

3

宮下

和士

4

山羽

5

6

曜子

2-4-8. 共同利用研究の受け入れ
番
号

提出日

1

2017/
3/28

2

5/17

3

5/19

4

6/20

5

6/16

6

7/24

7

8/22

8

10/10

申請者氏名

所属

研究課題名

利用
施設

利用
開始日

利用終了
予定日

新潟大学

中国科学院海
洋研究所

臼尻

4/14

4/19

5

1

5

忍路

5/22

5/22

1

2

2

臼尻

5/24

5/28

5

1

5

臼尻

6/28

6/29

2

1

2

七飯

7/11

2018/3/31

58

1

58

忍路

8/2

8/3

2

3

6

忍路

8/24

8/25

2

3

6

臼尻

10/18

10/22

5

1

5

計

80

13

89

新潟大学

信州大学

大分大学

東海大学

東海大学

新潟大学

計８件

32

2017 年度

臼尻、七飯、忍路利用人数 (人日: 2018 年 3 月末まで)
区 分

平成 29 年度

備 考

所属機関数

利用人数

延べ人数

学内（法人内）

8

757

5,798

国立大学

17

57

232

公立大学

2

7

20

私立大学

5

33

140

大学共同利用機関法人

1

1

3

民間・独立行政法人等

21

83

719

外国の研究機関616

41（うち大学院生）

(10)

(250)

(3314)

計

60

954

6,953

拠点施設と配属人員
拠点施設（括弧内は兼務）

実習協力施設・分野

臼尻水産実験所

七飯淡水実験所

忍路臨海実験所

洞爺臨湖実験所

生態系変動解析分野

教授

0

1(1)

0

1

1

准教授

1(1)

0

0

0

1

助教

1

(1)

1(1)

1

2

小計

2(1)

1

1(1)

2

3

技術職員

1

1

1

1

1

事務職員

1

1

0

1

1

小計

2

2

1

2

2

合計

4(1)

3

2(1)

4

5

人員配置

平成 30 年 3 月 31 日現在（括弧内は兼務または非常勤）

教授

准教授

講師

助教

助手

小計

技術職員

事務職員

合計

1

2

0

0

0

3

3

0

6

(2)

(1)

(0)

(3)

(0)

(6)

(2)

(4)

(12)

33

H29 年度七飯・臼尻・忍路協議委員名簿
氏名
山下

所属機関名
洋

役職名

京都大学 フィールド科学教育研究センター

教授

征矢野 清

長崎大学 環東シナ海環境資源研究センター教授

千葉

東京農業大学 生物産業学部教授

はこだて未来大学 システム情報科学部

教授

晋

和田 雅昭

木島 明博

東北大学大学院農学研究科

附属複合生態フィールド
教授

教育研究センター
山羽 悦郎

北海道大学 北方生物圏フィールド科学センター

教授

宮下 和士

北海道大学 北方生物圏フィールド科学センター

教授

水田 浩之

北海道大学 大学院水産科学研究院

教授

三谷 曜子

北海道大学 北方生物圏フィールド科学センター

准教授

34

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水圏ステーション公開水産科学実習要項
1. 実習課題
水棲動物の行動を計測しよう!（バイオロギング実習）
2. 実習目的
海洋環境の変動が大きな注目を集めている昨今にあっても，海洋生物の環境とその変動に応答する仕組みや，関係する基本要素のモニタリングは困難である．これを解決するために有用な手法として，バイオロギング・システ
ムが飛躍的な発展を遂げている．バイオロギング・システムとは，生物に小型計測機器を装着することにより，生物の行動や生息環境の情報を記録するシステムであり，1960 年代から現在にかけて機器の開発とともに急速に発展してきたシステムである．このバイオロギング・システムをアナログ時代から開発し，その基礎を作った第 1 世代，デジタル時代に移行し，システムの小型化によって対象種や計測パラメータを広げてきた第２世代があり，現在は環境情報と生物の行動情報を併せつつ，時空間をさらに広げてモニタリングする第３世代の育成が急務となっている．そこで，本企画では，学生を対象にバイオロギング・システムの取扱いおよびデータ解析スキルの向上を目的とした講習会を開催し，人材育成を図る．
3. 実習内容
臼尻水産実験所，並び，函館市国際水産・海洋総合研究センター（以下，「海洋センター」）において，バイオロギング機器の取扱習得・水棲生物（主に魚類）へのデータロガーによる行動計測方法の取得，および行動データ解析について学ぶ．
1 日目：バイオロギング講義・バイオロギング機器の取扱および魚類への装着と行動測定実習(海洋センター)
2 日目：GPS 位置測位実習・海洋生物の生態講義(臼尻水産実験所)
3 日目：バイオロギング行動データの回収・解析実習・レポート発表講
習および作成・海洋生物の可視化に関する講義(海洋センター)39

4 日目：データ解析・レポート発表(海洋センター)
4. 授業科目特別実習 11 単位（但し，単位は所属する大学が認めたときにのみ取得となる）
5. 実施場所
北海道大学北方生物圏フィールド科学センター臼尻水産実験所〒041-1613 北海道函館市臼尻町 152 tel: 0138-25-3237
函館市国際水産・海洋総合研究センター〒040-0051 北海道函館市弁天町 20-5 tel: 0138-85-6625
6. 実施期間
平成 29 年 9 月 4 日(月)〜7 日(木) 4 日間
(9 月 4 日(月)10:00 に函館市国際水産・海洋総合研究センター集合，7 日(木)17:00 に解散)
7. 対象学生
国立大学および公私立大学に在籍する学生．理系学部•学科に在籍する１～4 年次の者を対象とする．下記の定員に空きがある場合は, 大学院生も受講可能である．なお, 大学院生の単位の認定は出来ないので留意すること．
8. 定員
10 名（書類選考により採否を決定）
9. 提出書類その他(1) 特別聴講学生願書(別紙様式)(2) 写真(4.5×3.5cm 又は 3.0×2.4cm 前後)1 枚(3) 実習の受講を希望する理由(200 字以内)
(4) 学生教育研究災害傷害保険の加入を証明するもの（領収書・証明書等）※書類の提出が遅れる場合は申し出ること．

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10. 申込期限
平成 29 年 7 月 7 日(金) 必着
なお,申込期限後も定員に空きがある場合は,事務手続きが可能な範囲で受講を受け付ける．
11. 申込先
北海道大学北方生物圏フィールド科学センター 事務部学術協力担当〒060-0811 北海道札幌市北区北 11 条西 10 丁目
tel 011-706-3452

fax 011-706-4930※郵送の際,封筒の表に「公開水産科学実習参加申込書類在中」と朱書きする
こと．
※※所属大学の教務関係担当事務を通して申し込むこと。
12. 参加費
宿泊費（3 泊）と食費（9 月 4 日夕食〜7 日朝食）は参加者の実費負担とする（9,000 円程度予定）．
国立大学の学生は,所定の書式による申請により授業料は不徴収とする．公
私立大学の学生は,学部間による履修に関する協定を締結することにより授業料は不徴収となる． (協定の締結は,北海道大学水産学部と履修希望者が所属する学部担当者との打ち合わせにより進める．)※特別聴講学生等として受け入れる際の授業料等について,「北海道大学における特別聴講学生,及び特別研究学生に係る授業料等の不徴収に関する規程」(平成 16 年海大達第267 号)」に規定する要件を満たした場合は,これを徴収しない．
13. 問い合わせ先参加の手続きについて
北海道大学北方生物圏フィールド科学センター 事務部学術協力担当〒060-0811 北海道札幌市北区北 11 条西 10 丁目
tel 011-706-3452

fax 011-706-4930

e-mail: kyoryoku@fsc.hokudai.ac.jp

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実習内容について
北海道大学北方生物圏フィールド科学センター 生態系変動解析分野〒040-0051 北海道函館市弁天町 20-5 函館市国際水産・海洋総合研究センター217 号室

tel&fax 0138-85-6625

e-mail: aquatic@fsc.hokudai.ac.jp
14. その他
詳細な日程,実習内容,交通案内,日常生活上の注意などに関しては,受講決定者に別に通知する．

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北海道大学北方生物圏フィールド科学センター
平成29年度 公開水産科学実習（亜寒帯魚類を対象とした増養殖実習）
要項
1.授業科目
特別実習Ⅰ 1単位（北海道大学水産学部の単位）
単位は、所属する大学が認めたときにのみ修得となる。
2.実施場所
北海道大学北方生物圏フィールド科学センター七飯淡水実験所〒041-1105 北海道亀田郡七飯町桜町2-9-1 TEL 0138-65-2344 FAX 0138-65-2239(宿泊は 臼尻水産実験所：〒041-1613 北海道函館市臼尻町152 TEL 0138-25-3237)
3.実施期間亜寒帯魚類を対象とした増養殖実習（応用発生工学実習）
平成30年2月26日(月)～平成30年3月2日(金) 5日間（2月26日(月)12:00新函館北斗駅北口集合, 2日(金)16時新函館北斗駅、函館駅、
あるいは函館空港にて解散）
4.対象学生
国立大学および公私立大学に在籍する学生。理系学部•学科に在籍する2～4年次の者を対象とする。下記の定員に空きがある場合は,大学院生も受講可能である。なお,大学院生の単位の認定はできないので留意すること。
5.実習内容七飯淡水実験所に置いて、サケマス類を用いた増養殖に関わる実習と、モデル魚類を用いた発生工学手法の実習を行う。また、北海道において増殖事業を行っている事業所の見学も予定する。（指導教員：山羽悦郎、一部 征矢野清（長崎大学））
１）サケマス類の採卵実習、精子の凍結保存
２）サケマス類における染色体操作と倍数性判別
３）魚類の形態形成過程の観察
４）ゼブラフィッシュ、あるいはキンギョを用いたマイクロインジェクション、細胞移植などの発生工学実習５）水産海洋実践ネットワーク 連携プログラム（予定）
6.定員
10名
7.選考
書類選考により採否を決定する。
8.提出書類その他

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(1) 特別聴講学生願書(別紙様式)(2) 写真(4.5×3.5cm 又は3.0×2.4cm前後)1枚(3) 実習の受講を希望する理由(200字以内)(4) 学生教育研究災害傷害保険の加入を証明するもの(領収書・証明書等)※書類の提出が遅れる,または紛失等で再確認が必要な場合は申し出ること。
9.申込期限：平成29年12月15日(金) 必着
なお,申込期限後も定員に空きがある場合は,事務手続き可能な範囲で受講を受け付ける。
10.申込先北海道大学北方生物圏フィールド科学センター事務部学術協力担当〒060-0811 北海道札幌市北区北11条西10丁目 電話011-706-3452※郵送の際,封筒の表に「公開水産科学実習参加申込書類在中」と朱書きすること。
※※所属大学の教務関係担当事務を通して申し込むこと。
11.参加費
宿泊費（4泊）と食費（2月26日夕食〜3月2日昼食）8,000円程度。
宿泊は，北方生物圏フィールド科学センター 臼尻水産実験所となる。
国立大学の学生は,所定の書式による申請により授業料は不徴収とする。公私立大学の学生は,学部間による履修に関する協定を締結することにより授業料は不徴収となる。
(協定の締結は,北海道大学水産学部と履修希望者が所属する学部担当者との打ち合わせにより進める。)※特別聴講学生等として受け入れる際の授業料等について,「北海道大学における特別聴講学生,及び,特別研究学生に係る授業料等の不徴収に関する規程」(平成16年海大達第267号)」に規定する要件を満たした場合は,これを徴収しない。
12.問い合わせ先
参加の手続きについては
北海道大学北方生物圏フィールド科学センター事務部 学術協力担当〒060-0811 札幌市北区北 11 条西 10 丁目
電話：011-706-3452
実習内容については
北海道大学北方生物圏フィールド科学センター七飯淡水実験所〒041-1105 北海道亀田郡七飯町桜町2-9-1
電話：0138-65-2344
メールアドレスeyamaha@fsc.hokudai.ac.jp
ホームページ：http://www.hokudai.ac.jp/fsc/nanae/nanae.html
13.その他
詳細な日程,実習内容,交通案内,日常生活上の注意などに関しては,受講決定者に別に通知する。

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北海道大学北方生物圏フィールド科学センター
平成２9年度公開水産科学実習（春季フィールド科学実習）
要 項
1.授業科目
特別実習

1単位

2.実施場所
北海道大学北方生物圏フィールド科学センター忍路臨海実験所〒048-2561 北海道小樽市忍路1丁目460 TEL•FAX 0134-64-2303
北海道大学北方生物圏フィールド科学センター臼尻水産実験所〒041-1613 北海道函館市臼尻町152 TEL•FAX 0138-25-3237または5088
3.実施期間
春季フィールド科学実習～現場で学ぶ北海道の磯資源～
平成30年3月12日(月)～平成30年3月16日(金) 5日間（3月12日(月)10:00 北海道大学総合博物館前集合,
JR函館駅前解散）

3月16日(金)15:00

4.対象学生
国立大学および公私立大学に在籍する学生。理系学部•学科に在籍する2～4年
次の者を対象とする。下記の定員に空きがある場合は,大学院生も受講可能であるが、単位認定はできません。
5.実習内容・忍路臨海実験所および臼尻水産実験所において,コンブ類を対象とした生態調
査,遺伝子解析,昆布養殖施設の視察（3 日間）（指導教員：四ツ倉典滋,傳法隆）
・臼尻水産実験所において,ダンゴウオ科魚類を対象とした海中観察と生態観察（2 日間）（指導教員：宗原弘幸）
スケジュール3 月 12 日：北大総合博物館前集合,マイクロバスで小樽市へ移動,多様性調査（忍路臨海実験所泊）
13 日：遺伝子解析,生態調査,マイクロバスで伊達市へ移動（大滝セミナーハ

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ウス泊）
14 日：伊達市から函館市へ移動,種苗生産施設視察,議論（臼尻水産実験所
泊）
15 日：人工授精実験と調理実習（臼尻水産実験所泊）
16 日：シュノーケリングによる繁殖行動の観察,マイクロバスで函館駅へ移動
解散
6.定員
10名
7.選考
書類選考により採否を決定する。
8.提出書類その他(1) 特別聴講学生願書(別紙様式)(2) 写真(4.5×3.5cm 又は3.0×2.4cm前後)1枚(3) 実習の受講を希望する理由(200字以内)(4) 学生教育研究災害傷害保険の加入を証明するもの(領収書・証明書等)※書類の提出が遅れる,または紛失等で再確認が必要な場合は申し出ること。
9.申込期限：平成30年1月10日(水) 必着
なお,申込期限後も定員に空きがある場合は,事務手続きが可能な範囲で受講を受け付ける。
10.申込先北海道大学北方生物圏フィールド科学センター事務部学術協力担当〒060-0811 北海道札幌市北区北11条西10丁目 電話011-706-3452※郵送の際,封筒の表に「公開水産科学実習参加申込書類在中」と朱書きすること。
11.参加費
宿泊費（3泊）と食費*（3月12日夕食〜16日昼食）9,000円程度。
*
期間中の昼食は各自負担
国立大学の学生は,所定の書式による申請により授業料は不徴収とする。公私立大学の学生は,学部間による履修に関する協定を締結することにより授業料は不徴収となる。 (協定の締結は,北海道大学水産学部と履修希望者が所属する学部担当者との打ち合わせにより進める。)※特別聴講学生等として受け入れる際の授業料等について,「北海道大学における特別聴講学生,及び,特別研究学生に係る授業料等の不徴収に関する規程」

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(平成16年海大達第267号)」に規定する要件を満たした場合は,これを徴収しない。
12.問い合わせ先
北海道大学北方生物圏フィールド科学センター忍路臨海実験所（札幌研究室）〒060-0809 北海道札幌市北区北９条西9丁目
TEL:011-706-2585
FAX:011-706-3450
メールアドレスoshoro@fsc.hokudai.ac.jp
ホームページ：http://www.fsc.hokudai.ac.jp/oshoro/oshoro.html
北海道大学北方生物圏フィールド科学センター臼尻水産実験所〒041-1613 北海道函館市臼尻町152
TEL•FAX 0138-25-3237または5088
メールアドレス
usujiri@fsc.hokudai.ac.jp
ホームページ：http://www.hokudai.ac.jp/fsc/usujiri/usujiri.html
13.その他
詳細な日程,実習内容,交通案内,日常生活上の注意などに関しては,受講決定
者に別途に通知する。

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申込などの詳細はホームページをご覧ください
http://www.hokudai.ac.jp/fsc/

申し込み・問い合わせ先
北海道⼤学北⽅⽣物圏フィールド科学センター事務部学術協⼒担当〒060-0811 札幌市北区北11条⻄10丁⽬
申込締切：平成30年1⽉10⽇（⽔）必着

対象学⽣：国⽴⼤学および公私⽴⼤学に在籍する学⽣（2〜4年次対象）⽇時：平成30年3⽉12⽇（⽉）〜3⽉16⽇（⾦）
実施場所：忍路臨海実験所（⼩樽市忍路1丁⽬460）
⾅尻⽔産実験所（函館市⾅尻町152）
内
容：北海道の沿岸⽣物（藻類と⿂類）を対象とした資源⽣態学
・コンブ類の多様性と⽣態調査および種苗⽣産技術の習得
・ダンゴウオ科⿂類の繁殖⾏動の海中観察と⽣態調査
必要経費：9,000円程度（宿泊費4泊と⾷費3⽉12⽇⼣⾷〜16⽇昼⾷）*3⽉13⽇と14⽇の昼⾷は各⾃負担

北海道⼤学
北⽅⽣物圏フィールド科学センター
平成29年度公開⽔産科学実習

北海道大学北方生物圏フィールド科学センター
平成29年度 公開水産科学実習（海棲哺乳類実習）要項
1.授業科目
特別実習Ⅰ 1単位（北海道大学水産学部の単位）
単位は、所属する大学が認めたときにのみ修得となる。また、この単位を修得した学生が、他の実習を重複して受けた場合には、本単位を修得することはできない。
2.実施場所
北海道大学北方生物圏フィールド科学センター〒048-2561

北海道小樽市忍路１の460

忍路臨海実験所

TEL：0134-64-2303

3.実施期間海棲哺乳類実習
平成30年3月5日(月)～平成30年3月8日(木) 4日間（3月5日(月)13:00小樽駅集合、 8日(木)16時小樽駅にて解散）
4.対象学生国立大学、または単位互換協定を結んでいる公私立大学に在籍する学生。理系学部•学科に在籍する 1～4 年次の者（獣医系の場合、5 年次も可）を対象とする。下記の定員に空きがある場合は、大学院生も受講可能である。なお、大学院生の単位の認定はできないので留意すること。
5.実習内容漁業と海棲哺乳類との競合が問題となっている北海道沿岸において、海棲哺乳類と人との共存を考える実習を行う。日本海沿岸の忍路臨海実験所において、海棲哺乳類の行動や生態に関わる実習と、おたる水族館における行動観察も予定する。（指導教員：三谷曜子）
１）海棲哺乳類の生態と行動、人と海棲哺乳類との関係に関する講義
２）海棲哺乳類の個体識別、バイオロギング手法による鳴音解析、行動解析に関する実習３）おたる水族館における海棲哺乳類の行動観察、鳴音記録

6.定員
10名
7.選考
書類選考により採否を決定する。

8.提出書類その他

52

(1) 特別聴講学生願書(別紙様式)(2) 写真(4.5×3.5cm 又は3.0×2.4cm前後)1枚(3) 実習の受講を希望する理由(200字以内)(4) 学生教育研究災害傷害保険の加入を証明するもの(領収書・証明書等)※書類の提出が遅れる、または紛失等で再確認が必要な場合は申し出ること。
9.申込期限：平成30年1月10日(水) 必着
なお、申込期限後も定員に空きがある場合は、事務手続き可能な範囲で受講を受け付ける。
10.申込先北海道大学北方生物圏フィールド科学センター事務部学術協力担当〒060-0811 北海道札幌市北区北11条西10丁目 電話011-706-3452※郵送の際、封筒の表に「公開水産科学実習参加申込書類在中」と朱書きすること。
※所属大学の教務関係担当事務を通して申し込むこと
11.参加費
宿泊の際のシーツクリーニング代と食費（3月5日夕食〜8日昼食）など実費8,000円程
度。
宿泊は、北方生物圏フィールド科学センター 忍路臨海実験所となる。
国立大学の学生は、所定の書式による申請により授業料は不徴収とする。公私立大学の学生は、学部間による履修に関する協定を締結することにより授業料は不徴収となる。
(協定の締結は、北海道大学水産学部と履修希望者が所属する学部担当者との打ち合わせにより進める。)※特別聴講学生等として受け入れる際の授業料等について、「北海道大学における特別聴講学生、及び、特別研究学生に係る授業料等の不徴収に関する規程」(平成16年海大達第267号)」に規定する要件を満たした場合は、これを徴収しない。
12.問い合わせ先
参加の手続きについては
北海道大学北方生物圏フィールド科学センター事務部 学術協力担当〒060-0811 札幌市北区北 11 条西 10 丁目
電話：011-706-3452
メールアドレス：kyoryoku@fsc.hokudai.ac.jp
実習内容については
北海道大学北方生物圏フィールド科学センター生態系変動解析分野〒040-0051 北海道函館市弁天町20-5函館市国際水産・海洋総合研究センター
電話：0138-85-6625
メールアドレス:yo_mitani@fsc.hokudai.ac.jp
ホームページ：http://www.fsc.hokudai.ac.jp/suisan-kyoten/index.html

13.その他
詳細な日程、実習内容、交通案内、日常生活上の注意などに関しては、受講決定者に別に通知する。

53

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35

DMďĐEHkom7­TüöøĈċðÇR¤サマーインスティテュートにおける実習内容の説明
Summer Program: Student Experiments in Nanae Freshwater Station (2017/08/16)
Analysis of Japanese Crucian Carp Population

Back ground
Polyploidization is one of the important technique in both plant and fish breeding.

Artificial polyploidization inteleost fish had been studied in Nanae Freshwater Station, FSC, Hokkaido Univ.
Onozato, the second director of the station, is the pioneer of this field In Japan.

Especially, Professor

All mono-sex population,sterile triploid fish is induced by the chromosome set manipulation technique established by Dr. Onozato.
Dr. Onozato had an idea to establish this technique, chromosome set manipulation, by mimicking the
reproduction mechanism of crucian carp (Japanese name "Funa").

In this student experiment, we provide

experiment sessions to analysis of crucian carp population.
In Japan there are diploid (2n=diploid), triploid (3n=150) and tetraploid (4n=200) population are
distributed crucian carp. Triploid and tetraploid are almost all female individuals (male individuals are
seldomly found).
system.

Females with triploid and tetraploid reproduce gynogenetically, special reproductive

During gynogenesis, female produce unreduced eggs. Male pro-nucleus does not form after

fertilization, resulting male genome did not contribute embryogenesis. Therefore, all progenies from one
female have the same genome to her mother, forming clone population.

In natural population, male andfemale diploid, and all-female tri- and tetra-ploid individuals are mixed.
Dr. Onozato established the methods to distinguish the different ploidies and clonal lines in the natural
crucian carp.

Generally, the more ploidy increase, the more cell size increase, because nucleo-cytoplasmic

ratio shows constant value in the same species.

Therefore, diameter of red brood cell in tetraploid is thebiggest in size, and those in triploid and diploid are middle and little, respectively. As clonal individuals derived
from gynogenesis in triploid and tetraploid reproduction have the same immunological ability, one individual
accepts scales from other one belonging the same clone.
reciprocal scale transplantation by Dr. Onozato.
have been highly developed.

Clonal population have been distinguished by

On the other hand, recently, methods about DNA analysis

Different ploidies are easily detected by relative DNA contents measured byfluorescent dye combined to DNA and flow-cytometry (FCM).

Clonal individuals are also easily distinguishedby DNA analysis, such as DNA fingerprinting.
In this student experiments, several training of experiments for analyzing crucian carp individuals, suchas 1) collection of blood, 2) observation of erythrocyte, 3) FCM, 4) scale transplantation, are provided.

Materials and methods
Crucian carp individuals with triploid and tetraploidPreparation
1) 1 ml syringe, needle
2) 0.25% sodium citrate Ringer sol. (SCR)
3) Plastic petri dish4) Paper towel57

Protocol
Collection of blood sample
1) Settle a paper towel in the large plastic petri dish (9 cm in diameter)
2) Wet paper towel with small amount of tap water
3) Settle the needle on the top of the syringe4) Push the plunger to the tip, don't pull it.
5) Suck in the small amount of SCR (about 30-50ml) into syringe (to avoid blood coagulation)6) Anesthetize a fish by phenoxy-ethanol solution
7) Place the fish on the wet paper towel, and cover with other wet paper towel
8) Insert the needle from the ventral part of tail toward the lower part of spinal bone, namely vertebra.
9) Pull the plunger to suck blood10) Remove the syringe from fish after blood collection

Blood smear
1) Prepare slide glass and cover glass
2) Push the plunger carefully to make very small amount of blood drop at the tip of needle
3) Place the blood drop on the slide glass, and smear it by cover glass4) Immediately after placing, spread the blood drop on the glass by the edge of the cover glass5) Dry the slide glass with blood smear
6) Watch and compare the size of the erythrocyte

Ploidy analysis by FCM
1) Prepare the test-tube of 200 µl solution A for FCM
2) Push the plunger carefully to make very small amount of blood drop at the tip of needle
3) Mix with a blood drop and the solution A
4) Pour 1 ml solution B into the test-tube of solution A
5) Analyze the comparative DNA of the cell by FCM (Partec)

Scale transplantation
1) Prepare small plastic petri-dish (4.5 cm in diameter), and settle the paper towel in it.
2) Wet the paper towel with pure Ringer's solution3) Anesthetize a fish by phenoxy-ethanol solution
4) Place the fish on the wet paper towel, and cover with other wet paper towel
5) Set the petri-dish with fish on the stereo-microscope
6) Focus on the scales at the dorsal part of lateral line with darker color
7) Trace the posterior edge of the scale by the tip of the forceps to cut the skin.
8) Catch the posterior edge of the scale by the fine forceps and pull it out toward posterior, not to disturb
the surface cells, especially melanophores.
9) Collect about 6 piece of scales from the upper part of the lateral line by fine forceps, and immerse thescales on the paper towel with pure Ringer's solution

5810) Then, watch the scales at the ventral part of lateral line with weaker color
11) Trace the posterior edge of the scale by the tip of the forceps to cut the skin12) Catch the posterior edge of the scale by the fine forceps and move it slightly toward posterior without
removing.
13) Pick up the collected scale and cut the edge by fine scissors to make the scale size between donor
and transplanted site.
14) Insert a collected scale with dark color behind the scale moved. Don't upside down the donor scale.
15) Remove the upper scale and insert the donor scale, as far as it will go.
16) When successive transplantation, avoid the contiguous position where the former scales weretransplanted.

Evaluation of acceptance or rejection of transplanted scale
1) Observe the normal scales, especially their melanophores
2) Left transplanted scale (auto-transplantation) should be similar appearances to normal scales3) Center transplanted scale (allo-transplantation from the same clone) should be similar appearances to
auto-transplanted and normal scales.
4) Right transplanted scale (allo-transplantation from goldfish) should be rejected, because scale
epidermis changes whitish color.

Extraction of crude DNA from fin crips1) Mix a drop of blood with 1N NaOHo2) Boil the mixture over 95 C for 10 min
3) Centrifuge the mixture about 10000 to 15000 rpm for 1 min
4) Collect the supernatant
5) Amplified DNA from supernatant as template by RAPD-PCR

59

60

Thymine dimer

UV irradiated
DNA

3n
4n

XX’
XX

YY
XX

Sperm
Fer;liza;on → 2nd MD → all female
inac;va;on → with normal egg→ 1st cleavage→homozygous
female

1st cleavage → Super maleEgg
Fer;liza;on with→→homozygous
inhibi;on →  individualInac;va;on  normal sperm

Breeding techniques for ﬁsh propaga3on→ 2nd MD

→ Triploid.@3nA
Fer;liza;onNormal→with normal eggSperm→ 1st cleavage→ Tetraploid (4n)

Object of
the chromosome set manipula3on

Diluted sperm with seminal plasma were thin spread on the ﬂat surface
and irradiated with UV

Ini3al DNAUV
irradia3on�

Gene3c inac3va3on by UV irradia3on�Field Science Center for Northern Biosphere,
Hokkaido Univ.

Etsuro Yamaha
Nanae Freshwater Sta3on

Analysis ofJapanese Crucian Carp Popula3on 

Student Experiments

Summer Program 2017

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Normal diploid'&*)'$")'+($")'+( him
What kind of phenomenon,(!)#%!&*
inspiredProf. Hiroshi
Onozatoto get the idea like this?

Chromosome set manipula3on ofﬁsh species

1983-1986

,(!)#%!&* $")'+('&*)'$")'+(Induced haploidSecond director of this sta3on&

Rainbow trout&

Masu salmon

&White spottedcharr

Prof. Hiroshi OnozatoChromosome set manipula3on ofﬁsh species

1983-1986

Second director of this sta3on

Nucleus of sperm
or unfer3lized egg

First cleavage

Second matura3ondivision

Second matura3on division

Target Early cleavage

Breakdown of the 2ndpolar body spindle


French Press
Apparatus

3n-1504n-200Special reproduc3ve style, gynogenesis

2n=100All female popula3on
Diploid, triploid and tetraploid popula3on

Crucian carp in Japan

nd matura3on
Metaphase of the 1st cleavage 2 division

Breakdown of cleavage spindle

Doubling method of chromosome number

Inhibi3on of 2nd matura3on division or 1st cleavageUV irradia3on

TargetInhibi3on of cell division
Physical treatment:pressure, high or low temperature

Gene3c inac3va3on

Duplica3on of
genomePhysical.treatment: UV, γ ray,Chemical treatment: Toluidine blue etc.

Inac3va3on of
zygote genome

Chromosome set manipula3on

サマーインスティテュートにおけるプレゼンテーション（七飯淡水実験所）

61

1st matura3ondivision

Fer3liza3on

2nd matura3ondivision

2BObserva3on of erythrocyte size
3BFlow cytometry for measurement of rela3ve
DNA content
4BScale transplanta3on for clone analysis
5BRAPD-PCR analysis(1) blood smear(2) Fluorescent stain of blood nuclei(3) Genomic DNA extrac3on

1BPrepara3on of blood sample

Sessions for analysis of crucian carp popula;on 

Today’s experiment

→ Oﬀspring develop without paternal inheritance3) Sperm nuclei can not form male pronuclei→ All maternal chromosomes inherit to the oﬀspring1) This egg does not release 1st polar body2) Triploid chromosomes remain aher 2nd polar body release

DNA synthesis

Triploid crucian carp

Matura3on division during oogenesis in triploid crucian carp

Special reproduc3on system“Gyogenesis”

Hiromu Kobayashi (1970)

Joh-numa swanp
Tatebayashi city
Gunma Pref.×GoldﬁshGoldﬁsh
Kin-gyoCarassius auratus

Triploid and tetraploid
Crucian carp
(Funa)
Carassius auratus langsdorﬁi

Materials

resul3ng clone popula3on

These
have
samegenomic
genes,
, but there
areindividuals
many clonal lines
withthediﬀerent
contents

Carp

Female MaleLoach…………………

Oﬀspring

Mother ﬁsh3n & 4n Crucian carp

Oﬀspring fromtri- & tetra-ploid crucian carp

Jie DongCDr thesis (2014)

Tetraploid

DiploidTri- and tetra-ploid individuals
were found in Joh-numa

4n

Rela3ve DNA contents in erythrocyte by FCM4n1) 1 ml syringe, needle
2) 0.25% sodium citrate Ringer sol (SCR)
3) Plas3c petri dish4) Small piece of paper towel

Fish

Materials

Prepara3on of blood sample

DNA ﬁngerprin3ng: RAPD-PCR

Rejec3on 

How to discriminate diﬀerent clonal
lines in 3n and 4n?Erythrocyte size: nuclear/cytoplasmic rate is constant in species

3n

3n

Immunological test:
Acceptance
Reciprocal scale transplanta3on

2n

2n

Easy discrimina3on of polyploid62

Fish, syringe,
bood collec3on

Collected blood sample will be used for
direct observa3on (blood smear), FCM
and DNA extraction.�

Insert the needle from the ventral part of tail toward thelower part of spinal bone, namely vertebra. �1>< ;? 2=30:/;948
68375/

Dorsal aorta, dorsal vein
Vascular thorn 

Spinal chord Nerve thorn 

Check vertebrae in transparent
sample under stereomicroscope1) Seqle a paper towel in the large plas3c petri dish (9 cm indiameter)
2) Wet paper towel with small amount of tap water
3) Seqle the needle on the top of the syringe
4) Push the plunger to the 3p, don't pull it.5) Suck in the small amount of SCR (about 30-50µl) into syringe (toavoid blood coagula3on)
6) Anesthe3ze a ﬁsh by phenoxy-ethanol solu3on7) Place the ﬁsh on the wet paper towel, and cover with other wet
paper towel like blanket.
8) Insert the needle from the ventral part of tail toward the lower
part of spinal bone, namely vertebra. 9) Pull the plunger to suck blood10) Remove the syringe from ﬁsh aher blood collec3on11) Cover ﬁsh body with wet paper towel like blanket12) Mix blood and SCR13) Pour the mixture into empty test-tube by pushing the plunger
carefullyProtocol1) Put a small amount of blood mixture into the testtube of 200ml solu3on A for FCM by the thick 3p
of toothpick (to isolate the nucleus fromcytoplasm)
2) Mix the blood drop with Solu3on A
3) Put 10 ml sol. A with blood and mix 500 ml of
Solu3on B
4) Analyze the compara3ve DNA of the cell by FCM(Partec, Experimental Room 1)

Prepara3on of FCM sample

Coagula3on of blood begins soon ahercollec3on.
Before collec3on by syringe, suck in thesmall amount of SCR (about 30-50µl) intosyringe Image of blood samplingPrepara3on of blood sample

Fish, syringe,
bood collec3on

1. Isolation of nucleus in solution A
2. Specific fluorescent staining of
nuclear DNA
3. Comparison of comparative
amount of DNA by FCM

Principle of ploidy analysis by FCM1) Seqle a paper towel in the large plas3c petri dish (9 cm indiameter)
2) Wet paper towel with small amount of tap water
3) Seqle the needle on the top of the syringe
4) Push the plunger to the 3p, don't pull it.5) Suck in the small amount of SCR (about 30-50µl) into syringe (toavoid blood coagula3on)
6) Anesthe3ze a ﬁsh by phenoxy-ethanol solu3on7) Place the ﬁsh on the wet paper towel, and cover with other wet
paper towel like blanket.
8) Insert the needle from the ventral part of tail toward the lower
part of spinal bone, namely vertebra. 9) Pull the plunger to suck blood10) Remove the syringe from ﬁsh aher blood collec3on11) Cover ﬁsh body with wet paper towel like blanket12) Mix blood and SCR13) Pour the mixture into empty test-tube by pushing the plunger
carefullyProtocol

Dorsal aorta, dorsal vein
Vascular thorn 

Spinal chord Nerve thorn 

Isolated vertebrae (spinal bone)

63

because each cell is cover eachother

Too much blood, not good, 

Smear the drop by edge of cover glass

After prepartion, move tothe room each other.

2BObserva3on of erythrocyte size
3BFlow cytometry for measurement of rela3ve
DNA content
4BScale transplanta3on for clone analysis
5BRAPD-PCR analysis(1) blood smear(2) Fluorescent stain of blood nuclei(3) Genomic DNA extrac3on

1BPrepara3on of blood sample

forceps(2) Catch the posterior edge ofthe scale by the forceps(3) Pull the scale out toward
posterior(4) Collect several (about 6)
pieces of scales

Ventralside
(1) Cut
the posterior side by ﬁne

Dorssal side

1BAnesthe3ze a ﬁsh by phenoxy-ethanol solu3on
2BCollec3on of donor scales from dorsal side

Procedures

Tetraploid (4n)

Sessions for analysis of crucian carp popula;on 

Gut 

Scale transplanta3on

Diploid (2n)

2n
3n
4n
The
more ploidy
level increases,
Erythrocyte size: nuclear/cytoplasmic rate is constant in species
the more cell size does.

Results 2: Erythrocyte sizeRAPD-PCR and electrophresis have already performed.
The data will be provided.

1) Mix a drop of blood with 1N NaOH
2) Boil the mixture over 95oC for 10 min3) Decrease pH value by adding 20 ml of 1M Tris-HCl (pH8)4) Centrifuge the mixture about 10000 to 15000 rpm for 1min5) Collect the supernatant6) Ampliﬁed DNA from supernatant as template by RAPDPCR 

Extrac3on of crude DNA from bloodNext experimentIndividuals with diﬀerent ploidy
are distributed in Japan

Rela3ve DNA contents in erythrocyte by FCMResults 1: Rela3ve DNA content

Air drying

Observation is performed in

as liqle as possible microscope room.

A small drop of blood,

Prepara3on of blood smear

Crucian carp

Regenerated scale

goldﬁsh

Original scale
Focus

Tri-, tetra, hexa-ploid varia3on

Collected scales

Tetraploid varia3on

Kyoho (grape)

Rose

Ploidy breeding in plants

Coagula3on of blood begins soon aher collec3on.
Before collec3on by syringe, suck in the small amount of
SCR (about 30-50µl) into syringe 1) Collec3on of blood sample
2) Prepara3on of FCM sample (mix with sol. A)
3) Prepara3on of samples for DNA extrac3on(mix with NaOH solu3on)
4) Prepara3on of blood smear
5) DNA extrac3on6) Observa3on of blood smear (Experimental Room 2)7) Staining of FCM sample (solu3on B, Experimental Room 1)
8) Measurement of DNA by FCM

Order of experiments

64

Focus

Dendrites 

Fibrillary layer

Calciﬁed layer

Epidermis 

Covered with epidermis
with melanophores

Allo-transplanta3on: rejec3on

Opera3on, 6th July, 10 days before today 

Therefore, host ﬁsh transplanted with scales are providedA few days to few weeks are required for the judge
aher scale transplanta3onJudge of rejec3on or acceptanceMelanophoreC

GrooveRidge

Schema3c appearance of scale

Covered with epidermis

Center: allo-transplanta3on
from the same cloneRight: allo-transplanta3on
from goldﬁshAlwaysrejec3on

AcceptanceRejec3on

AcceptRejectbetween 2n
between 3n and 2n
between 4n and 2n

between 3n and 3n,
between 4n and 4n

between 3n and 3n,
between 4n and 4n

from 3n to 4nfrom 4n to 3n

Allo-transplanta3on

Allo-transplanta3on

Allo-transplanta3on

Allo-transplanta3on

Auto-transplanta3on:Always acceptance

4n individual
derives from 3nclonesTwo ﬁsh belong to
diﬀerent cloneTwo ﬁsh belong to
the same cloneTwo ﬁsh havediﬀerent genomes

Short conclusion: scale transplanta3on

scale core matrix C calcium phosphate and calcium carbonate 1) Observe the normal scales, especially their melanophores2) Leh scale should be similar appearances to normal scales
3) Center scale should be similar appearances to autotransplanted and normal scales.
4) Right transplanted should be rejected, because, scale
epiderm changes whi3sh color, and core matrix of scale issohen and melted

Leh: auto-transplanta3on
from host ﬁshThree scales were transplanted around the ventral part of host ﬁsh.

Evalua3on of rejec3on or acceptanceof transplanted scales

The skin cells are importantto judge the acceptance orrejec3on.
Please take carefully not toinjure as soh as possible 

Jie DongCDr thesis (2014)

DNA ﬁngerprin3ng

Auto-transplanta3on: acceptance

(1) Trace the posterior edge of the scale by the 3p of the forceps to cut
the skin(2) Catch the posterior edge of the scale by the ﬁne forceps and move itslightly toward posterior without removing.
(3) Pick up the collected scale and cut the edge by ﬁne scissors to makethe scale size between donor and transplanted site.
(4) Insert a collected scale with dark color behind the scale moved. Don‘t
upside down the donor scale.
(5) Remove the upper scale and insert the donor scale, as far as it will go. (6) When successive transplanta3on, avoid the con3guous posi3on
where the former scales were transplanted.

3BScale transplanta3on
around ventral side

Use two forceps with your both hands

Scale transplanta3on

65Goldﬁsh

Triploid crucian carpRAPD-PCR ampliﬁed by OPB-07 primers

Tetraploid crucian carp

OPB-07

Results 3: DNA ﬁngerprin3ng

It is s3ll unclear
how to generate polyploid individuals in crucian carp.

When male sperm forms male pronucleus aher fer3liza3on, higher
ploidy or mosaic individuals are induced
Moreover, male tetraploid have been found in natural popula3on. 1) Diploid, triploid and tetraploid popula3ons of crucian carp are
distributed in Japan.
2) Triploid and tetraploid reproduce gynogene3cally.
3) Polyploidy are discriminated by cellular size and DNA contents.
4) Clonal popula3ons of 3n and 4n are immunologicallydiscriminated by scale transplanta3on and by DNA ﬁngerprin3ng.
5) But, there are seldom excep3onal cases.

Conclusion部局ニュース

北方生物圏フィールド科学センターで 「公開水産科学実習」を開催
北方生物圏フィールド科学センター水圏ステーション・臼尻水産実験所，七飯淡水実験所および忍路臨海実験所は，文部科学省教育関係共同利用拠点（「食糧基地，北海道の水圏環境を学ぶ体験型教育共同利用拠点」）に認定されています。その取り組みの一環として，他大学の学生が参加できる公開水産科学実習「応用発生工学実習」「海棲哺乳類実習」「北海道の沿岸生物の増養殖実習」を，それぞれ

月26日（月）〜

月

日（金），

月

日（月）〜

日（木），

月12日（月）〜16日（金）に開催しました。
以下に，今回実施された件の実習を紹介します。これらの実習は来年も開催を予定していますので，興味のある方は当事業のホームページをご覧ください。
◆ http://www.fsc.hokudai.ac.jp/suisan-kyoten/index.html（北方生物圏フィールド科学センター）

応用発生工学実習―亜寒帯魚類を対象とした増養殖実習―
北方生物圏フィールド科学センター

どが行われました。加えて，本学と水れられないものとなった」「他大学の七飯淡水実験所で開催し，全国から

産海洋実践教育ネットワーク連携プロ

人との交流も本当に良い刺激となっ名の学生が参加しました。実習では，グラムを提携している長崎大学の征矢た」「同じ水産学に身を置く同年齢のサケマス類からの採卵など従来的な実野清教授も本実習に参加し，北海道とつながりができた」など，好意的な回

習に加えて，顕微注入を含む発生工学

異なる海域の増養殖技術の現状や取り答が数多く寄せられました。

など先端的な手法も体験し，水産生物組みなどについても講義・実習を行いの育種技術における未来への方向性にました。

なお，本実習は長崎大学の「水産海洋環境学実習Ⅰ（B）：産卵親魚を用

対する視座を与えることを目的としま

実習生のアンケートには，「実験・いて，卵子や精子形成を理解するためした。魚類の胚を操作するために使う観察での考察の仕方や順序を自分なりの実習」を合わせて受講することで，操作器具などを実際に実習生が作成すに工夫するということを学べた」「所より高い学習効果をあげられるようなることから始まり，魚類の正常発生の属大学の実験では行えないことだらけ

連携プログラムを構築しています。

観察，染色体の操作，遺伝子資源の保で非常に勉強となった」「新たな技術

存，また，魚類の発生に関する講義なを学んだ時の喜びは初めての経験で忘飼育サケマスの種類と特性の説明

飼育によるサケマス形態異常の説明

征矢野教授による卵巣細胞の解析実験

参加者とスタッフ

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ガラス器具作成の様子

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海棲哺乳類実習
北方生物圏フィールド科学センター

水族館で取ったデータについてのグ

日常の何百何千倍もよい経験が得られ

忍路臨海実験所で開催し，全国から10ループ発表と盛りだくさんで，夕食後た 」「 デ ィ ベ ー ト や プ レ ゼ ン を 通 し名の学生が参加しました。実習では，もディベート準備やデータ解析を行いて，自分の考えを人に伝えるための方

近年北海道沿岸で課題になっている漁ました。本年度は，国立科学博物館の法を学べた」など好意的な回答が数多

業と海棲哺乳類の共存について学ぶこ

動物研究部にて研究主幹を務める田島く寄せられ，実習は盛況のうちに終了とを目的としました。

木綿子博士を招待しての講義も開催し

しました。

泊

日の日程

で実施し，内容は講義，おたる水族館ました。

での行動観察と鳴音記録，ディベー

参加学生のアンケートには，「所属

ト，データ解析（バイオロギング，鳴大学では学べない専門的な内容の講義

音，形態測定，個体識別），そして，でとても面白かった」「たった数日で田島博士による講義

観察対象のアゴヒゲアザラシ

アザラシの行動観察

ディベートの様子

おたる水族館での集合写真

講義の様子

北海道の沿岸生物の増養殖実習
北方生物圏フィールド科学センターを深めました。なお，磯焼け海域で目るホテイウオ（地方名：ゴッコ）の人

忍路水産実験所・洞爺臨湖実験所・臼立って出現するサンゴモについては，

工授精の実験を行いました。また，潜尻水産実験所の道央から道南にかけて

それらの分類に詳しい広島大学の加藤水によりホテイウオを直接観察するとヶ所にまたがる実験所で開催され，亜記先生に解説をお願いしました。更ともにホテイウオが生息する冬の北海

名の学生が参加しました。

に，コンブ類の遺伝的多様性の検出を

道の海を実習生自身が体験し，その生

実習の前半では，磯焼け地帯のコンブ行い，形態と遺伝の両面から多様性の態の理解を深めました。

藻場のフィールド調査を通して藻場の実態について理解しました。実習の後実習生のアンケートには，「直接目役割や環境整備の重要性について理解

半では，回遊する亜寒帯性の魚類であで見て，講義を通して，海藻の役割やコンブ藻場の調査

採集海藻の標本作成

コンブの遺伝子抽出

全国から

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現状の認識をすることで，海藻の分野ても楽しかった」など好意的な回答がの面白さを知ることができた」「他大寄せられ，実習は盛況のうちに終了しの学生がいたこともあり様々な情報をました。

交換できた」「シュノーケリングがと潜水実習の様子

集合写真

臼尻の施設紹介

国立東華大学（台湾）との国際合同実習 「2018 Joint International Training
Course on Ecological and Environmental Research in Taiwan」を開催
本学と台湾の国立東華大学との大学

ング，生態系の炭素循環，水質等の環られました。また，本学に設置されて月締結）による

境計測，生態系構造・機能に関する講

い るGlobal Land Programme（GLP）

交流事業の一環として，大学院生（修義，現地実習，グループ・ミニプロ

Japan Oﬃceとも協力して実施しまし士）を対象とした合同実習をジェクト，成果発表などを英語で実施た。 な お， 本 実 習 は 環 境 科 学 院

しました。両大学から留学生を含む「フィールド科学特別実習Ⅰ」の一環した。両大学より計14名（うち本学かか国（日本，台湾，中国，ベトナム，

として行いました。

ら名）の大学院生が参加し，両大学

米国，インドネシア，ナイジェリア，の教員が合同で企画，指導にあたりまインド）の大学院生が積極的に受講，（環境科学院・地球環境科学研究院，した。本学の教員からは北方生物圏

意見交換し，相互交流する姿が見受け北方生物圏フィールド科学センター）

間交流協定（2017年

（月）〜

月

日

日（金）に台湾で開催しまフィールド科学センター／環境科学院の柴田英昭教授，福澤加里部准教授，
地球環境科学研究院／環境科学院の甲山隆司教授，渡邉悌二教授が参加しました。実習フィールドである台湾東部に位置する花蓮市郊外の大農大富地域
は，かつて日本統治時代にサトウキビ栽培が行われ，現在は森林公園として利用されています。本実習ではそれらの地域における歴史的な土地利用変化の背景について学ぶための講義と共に，フィールドでの野生動物モニタリ

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環境保全型有機農業について現地の農家から説明を受けている様子

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