Manual de Monitoreo
Submareal
Stuart Banks, David Acuña, Margarita Brandt, Rosita Calderón, Julio Delgado,
Graham Edgar, Lauren Garske-García, Inti Keith, Angela Kuhn, Roberto Pépolas, Diego Ruiz,
Jenifer Suárez, Nathalia Tirado-Sánchez, Mariana Vera, Luis Vinueza y Ewan Wakefield.

(Imagen: R. Gallardo)

Los métodos descritos en este Manual de Monitoreo Submareal fueron desarrollados a
través de la gestión del equipo científico del Área de Investigaciones Marinas (Biomar) dela Fundación Charles Darwin para las Islas Galápagos, durante un periodo de más de 15
años. Estos trabajos contaron con el soporte de una amplia base de expertos marinos,
estudiantes, voluntarios y donantes, los cuales están reconocidos en este documento.

Quito, 2016

© Conservación Internacional Ecuador, 2016
ISBN: 978-9942-14-300-6
Este documento debe citarse de la siguiente manera:
Banks, S., Acuña, D., Brandt, M., Calderón, R., Delgado, J., Edgar, G., Garske-García, L., Keith, I., Kuhn, A., Pépolas, R.,
Ruiz, D., Suárez, J., Tirado-Sánchez, N., Vera, M., Vinueza, L. y Wakefield, E. 2016. Manual de Monitoreo Submareal.
Conservación Internacional Ecuador y Fundación Charles Darwin. Quito, Ecuador.

Editado por:
Stuart Banks, Gerente de Ciencias Marinas, Paisaje Marino del Pacífico Este Tropical(ETPS, por sus siglas en inglés). Conservación Internacional, Galápagos.
Revisado por:Mariana Vera, Especialista en Mercadeo Social y Monitoreo Marino, Conservación Internacional Ecuador,
Galápagos.
Belén Vallejo, Coordinadora de Comunicaciones, Conservación Internacional Ecuador, Quito.
Diseño gráfico:
Alejandra Camacho
Fotografías de portada y contraportada:
Graham Edgar (portada), Rafael Gallardo (contraportada)
Fotografías internas:
Stuart Banks, Diego Bermeo, Fundación Charles Darwin - Biomar, Alejandra Camacho, Angel Chiriboga,
Graham Edgar, Gene Feldman, Rafael Gallardo, Jonathan Green, Hans Lugo, Juan Carlos Moncayo,
Macarena Parra, Jorge Ramírez, Diego Ruiz, Pelayo Salinas, German Soler, Anna Schubauer, William Sweet,
Natalia Tirado, Mariana Vera, Vulcan Inc. y Jon Witman.
Impreso por:Imprenta Rimana, Quito
El Manual de Monitoreo Submareal fue elaborado con el apoyo técnico de la Fundación Charles Darwin para las Islas
Galápagos y Conservación Internacional. Esta publicación fue financiada por The Leona M. and Harry B. Helmsley
Charitable Trust, en el marco del Proyecto Monitoreo Ecológico en la Reserva Marina de Galápagos (RMG), ejecutado
por Conservación Internacional Ecuador.
Las opiniones expresadas en este documento son de estricta responsabilidad de los autores y no representan
necesariamente las opiniones de CI-Ecuador o de sus donantes.
Para más información visite: www.conservation.org.ec

Esta obra posee una Licencia Creative Commons Atribución-No-Comercial-Compartir Igual 4.0 Internacional. Paraver una copia de esta licencia, visita http://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/ Esta obra se puede copiar y
difundir libremente citando la fuente, sin hacer un uso comercial de la obra original ni de las posibles obras derivadas, ladistribución de las cuales se debe hacer con una licencia igual a la que regula la obra original.

agradecimientos

Este Manual fue elaborado para ayudar a consolidar las bases técnicas para futuras
medidas de conservación en la Reserva Marina de Galapagos. La meta es contribuira los trabajos claves, arduos y cotidianos que realiza el Ministerio del Ambiente delEcuador a través de sus brazos operativos en las islas, el Parque Nacional Galápagos
y la Agencia de Bioseguridad. También reconocemos la apertura, el rol clave y la sólida
colaboración del Instituto Oceanográfico de la Armada del Ecuador (INOCAR) y de laCapitanía de las zonas portuarias durante el periodo 1997-2015.
Queremos agradecer a los donantes que apoyaron al Programa de Ciencias Marinas
de la FCD durante el periodo 1997-2015. Estas oportunidades no solo proporcionaron
un soporte financiero, sino que también convocaron trabajos complementarios.
Sembraron incentivos con impactos más allá del alcance original de los proyectos y
nos dieron aportes técnicos en colaboración con diversos actores locales, nacionales einternacionales. Estos aportes, sin duda, han generado un mejor entendimiento de losobjetos de la conservación de la zona marina-costera de Galápagos.
Este trabajo fue posible en gran medida gracias al nivel de compromiso e interés en laconservación de las islas de todos los actores mencionados anteriormente.

presentación

Laboratorio marino (ECCD-Biomar) desde la Ratonera (Imagen: D. Bermeo)

La selección de la temática presentada y analizada y el detalle metodológico desarrollado en este Manual demonitoreo Submareal, dan cuenta de la rigurosidad que proponen los autores para otorgar a la comunidad
académica y de ciencia uno de los instrumentos más completos para diseñar resultados científicos serios para
entender mejor la ecología de la Reserva Marina de Galapagos (RMG).
Este manual nos permite dimensionar la complejidad que supone cada proyecto científico, y todas las variables
que se deben tomar en cuenta al momento de empezar un nuevo proyecto de investigación.
Técnicas como los transectos, conteos, muestreos, censos, mediciones, video cámaras, búsquedas dirigidas,
vehículos de operación remota, entre otras; son herramientas clave que nos ayudan a desarrollar la información
y que se puede aplicar en muchos ejercicios de campo. La información levantada tiene tal relevancia, pues
a partir de ella se informa, discute, considera, y sustentan los diversos argumentos que orientan la toma dedecisiones de manejo en la RMG. Sin embargo; subrayo el sustancial aporte de Stuart Banks en el desarrollodel método científico sobre la base del conocimiento de la Reserva Marina de Galápagos, su dinámica oceánica,
los diferentes ecosistemas e incluso llegan al análisis del nicho y dinámica de muchas especies clave.
Quizás se trata del primer manual publicado en su categoría puesto que le permite al lector guardar la dimensiónde la complejidad de lo que es hacer ciencia e investigación marina en las islas Galápagos y también encontrar
el enlace entre la técnica , la experiencia y el conocimiento.
Este manual de Monitoreo Submareal nacido en Galápagos, marca una pauta para que los futuros investigadores
marinos puedan replicar el método científico cuyo desarrollo ha tomado varias décadas de perfeccionamiento yque hoy pueden ser de utilidad para su aplicación presente y futura en un País que por primera vez empieza a mirar
con seriedad a la ciencia, la investigación y su importancia para el manejo y conservación de nuestros mares.
Este manual sin duda, pasa a ser un documento de “uso obligatorio” para antiguos y nuevos investigadores quequieran sumergirse en las profundidades marinas y entregarnos la información más relevante para una mejor
comprensión de un mundo oceánico aún desconocido.

Walter Bustos
Director del Parque Nacional Galápagos

Reconocimientos:
Este manual de monitoreo es el resultado del arduo trabajo, el profesionalismo, el compromiso y la buena
voluntad de docenas de investigadores, voluntarios y estudiantes de la Fundación Charles Darwin. Desde1997 han contribuido a la conservación de la Reserva Marina de Galápagos (RMG) mediante el desarrollode conocimiento científico sobre su estructura y funcionamiento. A lo largo de los años, nuestra mayor
fuente de inspiración y motivación ha sido la increíble mezcla de vida y misterio que caracteriza a lasislas Galápagos. La fascinación por el mar fue el común denominador para la formación de un equipoúnico de personas de diversas experiencias que comparten una misma visión: desarrollar ciencia para laconservación de Galápagos. Quienes tuvimos la fortuna de explorar las profundidades de la RMG comoparte de ese equipo, llevamos a cabo nuestra misión pensando siempre en nuestros principales socios: laDirección del Parque Nacional Galápagos (DPNG) y el Instituto Oceanográfico de la Armada del Ecuador(INOCAR). De igual manera, siempre contamos con el apoyo de diversos donantes, organizaciones nogubernamentales, universidades y la comunidad local, en la ardua tarea de contribuir a la sostenibilidad
de este patrimonio natural de la humanidad.

Tortuga verde, Chelonia mydas (Imagen: R. Gallardo)

La realización de los proyectos y estudios descritos en esta guía fueron impulsados originalmente por
un grupo de profesionales visionarios, que fueron clave en el desarrollo de la investigación marina en
el archipiélago. Entre ellos se encuentran Rodrigo Bustamante, Eliécer Cruz, Robert Bensted-Smithy Pippa Heylings. Cabe destacar a Graham Edgar y a Jon Witman, cuyo rigor científico ha servido deinspiración y apoyo a los investigadores del área de investigación y conservación marina de la Fundación
Charles Darwin, conocida informalmente como BIOMAR. De igual manera, el trabajo de expertos como
Manfred Altamirano y Manuel Bravo fue clave para construir un puente entre la ciencia y el manejo. Otros
colaboradores clave han sido Ken Collins, Terry Dawson, John Morrison, Joshua Feingold y Gene Feldman,así como Peter Glynn y Cleve Hickman, que han sido eminencias en sus respectivos campos de estudiodesde la década del 70. Por último, cabe resaltar a dos ejemplos para la ciencia y el buen vivir: Günther
Reck y Godfrey Merlen. Todos ellos representan un cúmulo de gente inspiradora que realiza su trabajo con
verdadera pasión y cuyo conocimiento ha contribuido a entender y conservar los ecosistemas marinos delas islas Galápagos. Mi reconocimiento y agradecimiento a todos ellos.
Desde la declaración de la RMG en 1998, más de 300 profesionales, estudiantes y voluntarios hanaportado al trabajo de BIOMAR. Sus labores, inversión y legado están reflejados en este manual. En lo
personal, espero que este documento ayude a preservar el rol técnico velado por BIOMAR y que, además,sirva como guía para que futuros investigadores continúen con el desarrollo de la investigación marina en
un Galápagos que nunca deja de cambiar y de asombrarnos.

Stuart BanKs
Oceanógrafo de la ECCD (Mayo 2000 - Junio 2014)

8 Manual de Monitoreo Submareal

Alex Hearn

Franklin Arreaga

Jenny Mallinson

Petra Wallem

Alicia Bertolotti

Franz Smith

Jerson Moreno

Priscilla Martínez

Ana Astorga

Giancarlo Toti

Jessica Ratcliff

Richard Wollecombe

Ana Dolma

Graham Edgar

Johan Romero Reina

Rob AdamsÁngel Chiriboga

Inti Keith

Jon Witman

Robert SanzogniÁngela Kuhn

Karen Looft

Jorge Baque

Roberto Jiménez

Annemarie Kramer

Karol GarcíaJose Miguel Fariña

Roby Pépolas

Annie Lalancette

Ken Collins

Juan Carlos Balda

Rodrigo Bustamante

Annika Krutwa

Kirsten Nash

Julio Delgado

Rosita Calderón

Ben Ruttenburg

Lauren Garske

Marco Toscano

Santiago Vega

Claire Raymond

Lilly Milligan

Mariana Vera

Scott Henderson

Claudia Molina

Linda Kerrison

Marina Andrés

Soledad LunaDavid Acuña

Lissa BarrMatthias Wolff

Steve Tengwell

Diego Ruiz

Luis Vinueza

Mauricio Castrejón

Stuart Banks

Ewan Wakefield

Macarena Parra

Mónica Calvopiña

Susan Baker

Fernando Cornejo

Malcolm Lindsay

Natalia Tirado

Terry Dawson

Fernando Pinillos

Margarita Brandt

Pamela Flannigan

Vanessa Francisco

Fernando Rivera

Jenifer Suárez

Paul Tompkins
Edición por Stuart Banks 9Lobo Marino de Galápagos, Zalophus wollebaeki (Imagen: R. Gallardo)

Un agradecimiento especial a los investigadoresy buzos científicos involucrados en el trabajo
de campo del monitoreo submareal
1994 - 2014

TABLA DE CONTENIDOS
1. Antecedentes

13

2. Objetivos del monitoreo submareal

21

3. Selección y caracterización de sitios de diagnóstico29

4. Indicadores sobre el estado biofísico de la RMG

33

5. Seguridad y prerrequisitos para el buceo

40

6. La organización del buceo científico en el campo

43

7. Macroinvertebrados sésiles y algas

47

8. Peces demersales de arrecife y vertebrados marinos

52

9. Macroinvertebrados móviles

59

10. Mesogastrópodos63

11. Censo de peces pelágicos62

12. Caracterización y seguimiento del estado de los hábitats de la RMG

67

13. Búsquedas dirigidas para especies amenazadas y especies problemáticas

73

14. Mapeo y monitoreo de arrecifes coralinos

82

15. Muestreo oceanográfico

91

16. Técnicas de monitoreo remoto submarino

112

17. Colección, fijación, preservación y etiquetado de especies

119

18. Las colecciones marinas

122

19. El manejo de datos

128

20. Literatura citada

132

Punta Moreno (Imagen: M. Vera)

LISTADO DE TABLAS
Tabla 2-2: :Fuentes principales de información biofísica aplicado a las líneas de investigación para la RMG porparte de la FCD.

25

Tabla 3-3A:

Grupos de sitios seleccionados para el monitoreo ecológico submareal.

31

Tabla 3-3B:

Grupos de sitios seleccionados para el monitoreo ecológico submareal.

32

Tabla 4-1:

Índices informativos sobre el diseño espacial del APM.

34

Tabla 4-2 A:Índices biofísicos para la RMG basados en datos poblacionales obtenidos por censos visuales,
marcaje y recaptura.

35

Tabla 4-2 B:Índices biofísicos para la RMG basados en datos de comunidades por hábitat obtenidos por mediode censos visuales y modelaje.

36

Tabla 4-2 C:Índices oceanográficos y de clima para la RMG basados en datos remotos satelitales, sensores
submarinos y cruceros oceanográficos.

37

Tabla 4-2 D:Índices biofísicos para la RMG basados en estimaciones de reclutamiento por censos poblacionales
y uso de colectores de larvas y juveniles.

38

Tabla 4-2 E:Índices biofísicos para la RMG basados en datos sobre las pesquerías artesanales de Galápagos.

39

Tabla 8-1:

Intervalos de tallas aplicados para el monitoreo de peces con su referencia en la Base de Datos
Submarina.

54

Tabla 8-2:

Rangos típicos de tallas para una selección de peces comunes.

55

Tabla 12-1:

Escala semicuantitativa de cobertura aplicada en el mapeo.

70

Tabla 12-2:

Las categorías aplicadas en el mapeo de hábitat submareal (ejemplo de un perfil vertical).

70

Tabla 13-1:

El registro de peces y macroinvertebrados móviles costeros poco comunes considerados
amenazados según criterio de UICN Lista Roja (v2013.2).

77

Tabla 13-2:

El registro de corales ahermatípicos sésiles considerados amenazados según criterio de UICN Lista
Roja (v2013.2).

78

Tabla 13-3A: El registro de algas marinas consideradas amenazadas según criterio de UICN Lista Roja, (continúa
en tabla 13-3B).

78

Tabla 13-3B: El registro de algas marinas consideradas amenazadas según criterio de UICN Lista Roja,(continuación de tabla 13-3A).

79

Tabla 14-1:

Tipos de muestreo aplicados al monitoreo de las comunidades de corales hermatípicos.

84

Tabla 14-2:

Consideraciones para el uso de complots fijos y transectos al azar.

85

Tabla 15-1:

Especificaciones de los instrumentos oceanográficos utilizados de manera rutinaria en el monitoreo
de la RMG.

106

TABLA 16-1

Tratamientos típicos para la anestesia, fijación y preservación de invertebrados.

121

Tabla 18-1:

Número de especies marinas en los principales grupos taxonómicos de Galápagos, después deHickman (2009), ampliado y actualizado para incluir grupos adicionales hasta el 2013.

123

Tabla 18-2:

Información requerida para entregar especímenes en el museo.

124

LISTADO DE FIGURAS
Figura 1-1:

Biogeografía de la RMG.

15

Figura 1-2:

Mapa del esquema consensuado de zonificación de la Reserva Marina de Galápagos luego delproceso de demarcación física y señalización costera oficial por el IGM, INOCAR, DPNG en el
2005-2006.

15

Figura 1-3:

Distribución del esfuerzo en el monitoreo submareal entre 1994-2014 a través de 1500 muestreos
en 280 sitios.

16

Figura 1-4:

Esfuerzo de muestreo submareal en la zona costera (hasta 40 m de profundidad) entre los años
1994-2014 para cada grupo taxonómico principal.

17

Figura 1-5:

Escala espacial y temporal del aporte de la ciencia realizada en la RMG.

19

Figura 2-1:

Ejemplos de las contribuciones del monitoreo ecológico de la FCD a procesos de entendimiento,
concientización y manejo de la RMG.

22

Figura 3-1:

Distribución de las agrupaciones de sitios seleccionados para el monitoreo ecológico submareal
2004-2014.

30

Figura 3-2:

Criterio aplicado para la selección de sitios diagnósticos para el periodo 2004-2014.

30

Figura 6-1:

Un transecto submareal típico para el censo visual de 50 m de largo.

46

Figura 7-1:

Un cuadrante de PVC con 81 puntos de intersección cada 5 cm en un área de 0.25 m2.

47

Figura 7-2:

Posición del cuadrante a lo largo de la cinta.

48

Figura 7-3:

Ejemplo de una hoja de datos de campo para las especies invertebradas sésiles y algas.

49

Figura 7-4:

Cuadrante de PVC con sus respectivas estimaciones de abundancia por especie.

50

Figura 8-1:

Muestreo de peces demersales por 2 pasillos de 5 m x 50 m .

53

Figura 8-2:

Ejemplo de una hoja de datos de campo para peces y vertebrados marinos.

56

Figura 9-1:

Transecto de muestreo de macroinvertebrados móviles.

60

Figura 9-2:

Medidas para los macroinvertebrados móviles para los grupos principales (gasterópodos, erizos,
estrellas del mar y holoturoidea).

61

Figura 9-3:

Ejemplo de hoja de datos para macroinvertebrados móviles tomado en el campo para las dos
profundidades (15 m y 6 m).

61

FIGURA 10-1

Identificación y conteo de mesogastrópodos en el barco después del buceo para devolverlos alagua de inmediato.

61

2

Figura 11-1: Sistema de estereovideo (DOVS) llevado para censos de peces pelágicos.

66

Figura 12-1: Hábitats principales de la Reserva Marina de Galápagos y sus extensiones estimadas.

68

Figura 12-2: Indicaciones para el mapeo de un hábitat en una profundidad fija (aquí a 15 m) con intervalos de 10
m y por perfiles verticales con intervalos de profundidad de 3 m.

71

Figura 13-1: Ejemplos de tres especies presumidas extintas luego del evento de El Niño entre 1982 y 1983.

74

Figura 13-2: Ejemplos de especies consideradas vulnerables, encontradas por búsquedas dirigidas durante elmonitoreo ecológico 2004-2014.

74

Figura 13-3: Pocillopora Sp. blanqueado al lado de Pavona clavus (flecha amarilla) demuestra la diferencia devulnerabilidad a estrés termal entre especies de coral en el mismo arrecife.

75

Figura 13-4: (A) Camas de macroalgas de kelp vulnerable Eisenia galapagensis que representa un hábitat
complejo para muchas especies que fueron desplazadas con la llegada del erizo verde Lytechinus(B) en solo 5 meses en el 2007 (Oeste de Fernandina).

76

Figura 13-5: Ejemplos de especies presentes en la RMG y consideradas potencialmente problemáticas por sus
impactos en otras regiones y por su capacidad para alterar la estructura de las comunidades marinas.

80

Figura 14-1: Reclutamiento de peces juveniles sobre Pavona sp., Isla Wolf, Bahía Tiburón a 12m. Los arrecifes
de corales suele ser sitios particularmente productivos.

83

Figura 14-2: Buzos toman puntos de intersección para cada colonias que evalúan (B) Una parcela fija parael monitoreo de corales con 3 tramos de 10m en 3 secciones, todo en una sola profundidad(normalmente 15m y 6m)

83

Figura 14-3: Estimación del porcentaje de mortalidad en la superficie de un coral.

86

Figura 14-4: Mediciones típicas sobre una colonia masiva de coral. Medida de diámetro entre los puntos másaléjanos de la colonia y altura desde la cima hasta la base. Para corales incrustantes este puede serno más que 0.5cm o hasta 7-8m en las colonias más grandes.

87

Figura 14-5: Ejemplos de blanqueamiento de los corales por choques extremos de agua cálida durante eventos
fuertes de El Niño y por choques de agua fría durante eventos de La Niña

87

Figura 14-6: Guía visual a las condiciones de corales registrados: DTTS= Discoloration Tissue Thinning
Syndrome; TRM= Trematodiasis; UD= Uncharacterized Disease; GA= Abnormal Growth; WB= White
Band; WRBS= white band, ring or spot (según Vera & Banks 2008).

88

Figura 14-7: Ejemplo de una hoja de datos tomado entre una pareja de buzos realizando mediciones de corales
por transectos de intersección.

90

Figura 15-1: Localización del arreglo instrumental oceanográfico TAO - TRITON y delimitación aproximada deregiones de análisis de El Niño.

92

Figura 15-2: Series de tiempo de los índices Oscilación Decadal del Pacífico (PDO), El Niño - Oscilación del Sur(ONI), y anomalías de temperatura superficial del mar en la estación meteorológica de la ECCD, Isla
Santa Cruz FCD.

93

Figura 15-3: Superficies de clima marino de Galápagos (temperatura superficial del mar) A: anomalías de agua
fría; B: anomalías de la agua caliente; C: rango en anomalías medias, calculada a partir de 5 años
de datos mensuales.

95

Figura 15-4: Desarrollo de modelos de circulación oceánica.

97

Figura 15-5: Mapeo de alta resolución del área noroeste de la RMG, con capas simultáneas de batimetría y sonar(side-scan) que caracterizan el sustrato profundo.

98

Figura 15-6: Preparación del equipo CTD dentro de una juala de acero inoxidable para su protección con sensores
ISUS para medición de nitratos y fluorímetro WetLabs (clorofila a), en el laboratorio marino de la FCD.

98

Figura 15-7: Un instrumento HyperSAS montado en la proa del M/N Sierra Negra. Mientras se acerca a la Isla
Wolf toma perfiles hiperespectrales de la radiación E-M del agua.

100

Figura 15-8: Cobertura de muestreo oceanografico in situ 2005-2010.

101

Figura 15-9: Preparación y recuperación de boyas oceanográficas submareales para la limpieza y reprogramaciónde instrumentos.

102

Figura 15-10: Programación, preparación y colocación de los loggers de temperatura.

104

Figura 15-11: Un ejemplo de un mapa preparado como ayuda de memoria para reencontrar una estación fija
submareal de temperatura instalada a 10 m y 20 m de profundidad en la costa de Isabela.

105

Figura 15-12: Perfiles verticales de temperatura, salinidad y fluorescencia de la clorofila-a en dos sitios (El Muñeco
y la mitad del Canal Bolívar, en Isla Isabela).

107

Figura 15-13: (A) Medidor de flujo instalado en la boca de una red de plancton; (B) Red cónica de zooplancton con
malla de 335 um o 100 um; (C) Red cónica de fitoplancton con malla de 20 um.

108

Figura 15-14: (A) Red de bongo en la superficie; (B) Red de neuston, utilizada para colectar organismos que flotan
en la superficie o directamente bajo ella, como algunos tipos de larvas de peces y medusas.

107

Figura 15-15: La red de bongo también puede ser manejada por buzos en rastreos submarinos al nivel decomunidades bentónicos.

108

Figura 15-16: Ejemplos de zooplancton registrados en el laboratorio.

111

Figura 16-1: La construcción de un fotocuadrante depende mucho del tipo de lente para una captura con una
resolución alta que facilite la identificación en las imágenes.

113

Figura 16-2: Una cámara con lente Fisheye también tiene aplicaciones para caracterizar hábitats pero es
necesario corregir el efecto de distorsión.

113

Figura 16-3: (A) Ejemplo de un cuadrante fotográfico con proyección sobre una cuadricula para el análisis y laestimación de la abundancia de especie y (B) el muestreo con puntos al azar utilizando el programa
CPCE.

114

Figura 16-4: Software para la manipulación de imágenes puede corregir la distorsión de imágenes causada por
los lentes de las cámaras con la pérdida de nitidez en los bordes.

114

Figura 16-5: Imágenes de alta definición (cortesía de la operación del M/V Octopus) colectadas por el vehículo
remoto de exploración (ROV) a 1500 m en el 2005.

116

Figura 16-6: Imagen de alta definición de comunidades hidrotermales en el sitio 'Iguanas' ubicado en el Dorsal
de Galápagos (Galápagos Spreading Centre) tomados por un vehículo remoto de exploración (ROV)a 1670 m en el 2010.

116

Figura 16-7: Zonas de interés por inmersiones exploratorios con VOR hasta 2500 m de profundidad.

117

Figura 16-8: Un monte submarino de 50 km de largo ubicado al sur de la Isla Marchena tiene una batimetría de2000 m en su base hasta 800 m sobre su plataforma.

118

Figura 18-1: Ejemplos de las colecciones marinas incluyendo organismos secados, preparaciones de partes deorganismos que son diagnósticos para la identificación (como los otolitos de peces) y organismospreservados en solución de alcohol.

123

Figura 19-1: La Base de Datos Ecológica Submareal Remota. La base de datos de campo fue diseñada para
asegurar el ingreso de datos durante los viajes al campo de buceo y está vinculada con la Base deEspecies y Colecciones de la FCD.

130

Nudibranquio nadador, Glaucus Sp. (Imagen: A.Chiriboga)

Arco de Darwin (Imagen: R. Gallardo)

ANTECEDENTES
Las islas Galápagos se encuentran localizadas en la confluencia de tres corrientes
oceánicas principales cuya fuerza y extensión varían espacial y temporalmente,influenciadas por procesos oceanográficos que operan desde la escala de la cuencadel Pacífico hasta escalas locales de pocos kilómetros (Banks 2003). La extensióndel archipiélago –138 000 km2 en la Reserva Marina de Galápagos (RMG)– y la
influencia y naturaleza de cada una de estas corrientes generan cierta conectividad
con otras provincias biológicas como el Indo-Pacifico, Panamá y Perú-Chile, pero
también barreras espaciales que han permitido el aislamiento y evolución decomunidades marinas discretas (figura 1-1). Tales diferencias permiten dividir
el archipiélago en regiones biogeográficas separadas por su afinidad y origen(Wellington 1975, Jennings et al. 1994, Bustamante et al. 2003, Edgar et al. 2004).

1“2.1 Proteger y conservar los
ecosistemas marino-costeros
y su diversidad biológica parael beneficio de la humanidad, lapoblación local, la ciencia y la
educación”.
Plan de manejo de la Reserva
Marina de Galápagos(DPNG) 1999

Los procesos biológicos como la depredación, la herbivoría y la competencia(los cuales en la actualidad han sido estudiados por relativamente pocos
grupos taxonómicos en Galápagos) ejercen su efecto en la estructuración de lascomunidades, particularmente a escala local, y su influencia depende en granmedida de los procesos oceanográficos a gran escala (Wellington 1975, Vinueza
2006, Witman y Smith 2003).
Sin embargo, el grado de complejidad ecológica y el estado actual de las comunidades submareales (su distribución y estabilidad en el tiempo) son el resultado deuna multitud de interacciones entre las especies y su ambiente. Tales interacciones
están influenciadas por perturbaciones, las cuales exigen presiones sobre componentes y procesos del ecosistema. Si las perturbaciones son persistentes o de granmagnitud, el resultado puede terminar en una reestructuración de las comunidades
cambiando el funcionamiento y las tasas de diversidad. Entre las perturbaciones
más impactante de origen natural se encuentra el ciclo de El Niño Oscilación del Sur(ENOS), el cual ha esculpido el entorno natural de las islas por miles de años. Otros
factores de décadas más recientes provienen del aumento del uso antropogénico
de la zona costera. En realidad, es la interacción entre diferentes factores –comocambios abruptos de clima, escenarios de extracción pesquera, el ingreso de especies invasoras facilitado por el hombre y la amplia gama de modalidades de uso
costero– que deben ser comprendidos mejor para el adecuado manejo y conservación de la RMG.

Edición por Stuart Banks 15

Figura 1-1: Biogeografía de la RMG.
El estudio de la composición delas comunidades y los regímenes
oceanográficos ha llevado a una
mejor comprensión de la distribuciónde especies de la RMG en losúltimos 40 años (arriba según Edgar
2004) y a una mejor descripciónde las corrientes que influyen enel archipiélago (fuente Banks et al.
2012).

Además de la variación espacial existente, los marcados cambios oceanográficos
entre las estaciones fría y caliente y la presencia de anomalías climáticas a granescala como El Niño, asociadas con las altas temperaturas y los bajos niveles
de nutrientes, han provocado reducciones en el número de especies presentes.
Muchos efectos han sido dramáticos a lo largo de toda la cadena trófica, como
los observados durante los últimos eventos de El Niño de 1982-1983 y de 19971998 (Glynn 1990, Banks et al. 2011). El estado de los ambientes marinos en
Galápagos se ha visto afectado por la aparición y el posterior desarrollo (y colapso)
de pesquerías de “rápida ganancia” como el pepino, así como de pesquerías másrentables en el tiempo como la langosta y la pesca blanca.
Otros impactos son más indirectos y están ligados al aumento de la accesibilidad(apertura geográfica) entre las Islas y el resto del mundo (Grenier 2010, Edgar et al,
2008, 2009). El mercado emergente de turismo basado en la naturaleza, por ejemplo,
es hoy en día el principal motor económico y sigue promoviendo el desarrollo enlas áreas pobladas de las Islas. A pesar de que el área ocupada por la población
solo representa un 3% de la provincia, con más de 25 000 residentes en el censo
nacional del 2010, las actividades productivas extienden una huella más amplia en elárea protegida de la RMG que además se alimenta de un flujo continuo de visitantes.
En el 2013, más de 200 000 turistas (incluyendo modalidades de visita terrestre y
navegable) llegaron a las islas, aumentando en un 13% con relación al año anterior(DPNG, 2014). Como consecuencia, los efectos sobre los sistemas naturales varían
según la naturaleza e intensidad de las actividades realizadas (navegación, pesca,
ciencia, buceo recreativo, etc.), al nivel de acoplamiento del usuario a las normativas
de manejo vigentes y a la eficacia de dichas medidas.
El nivel de riesgo para las metas de conservación de la RMG, así como de sus
servicios ecosistémicos de importancia para el ser humano (ej. stocks pesqueros
viables y seguridad alimentaria, oferta turística con base en la naturaleza, etc.)
dependen de la combinación de estas influencias antropogénicas (grado desostenibilidad de las pesquerías locales en el tiempo, contaminación en zonas
portuarias o invasiones de especies marinas exóticas por el tráfico marítimo) y delas perturbaciones por cambios naturales climáticos. Dichos factores han tenido
una influencia negativa en el funcionamiento de los ecosistemas marinos en tododel mundo y su efecto ya se empieza a sentir en Galápagos desde la década de los
90 (Ruttenberg 2001, Edgar et al. 2009).
16 Manual de Monitoreo Submareal

Figura 1-2:(A) Mapa del esquema consensuado
de zonificación de la Reserva Marina
de Galápagos luego del proceso dedemarcación física y señalización
costera oficial por el IGM, INOCAR,DPNG en el 2005-2006. El esquemade colores refleja la señalización enla costa según la normativa de la
Armada del Ecuador.

(A)(B) Desde el 2014, dicho esquema
de zonificación está bajo evaluaciónpara integrar mejoras en el manejodel espacio marino, costero yterrestre. Nuevos ajustes al anterior
abarcan las aguas abiertas,
integran la zona costera y elespacio terrestre e introducen una
nomenclatura común basada enservicios y bienes ecosistémicos
bajo el marco del Plan del Manejo
de la DPNG. Estos mapasejemplos
de escenarios exploratorios fueron
trabajos iniciales que formaronparte de la búsqueda de mejoras enel esquema actual para optimizar
un uso sostenible que minimicela vulnerabilidad socio-ecológica
de la RMG (Obregon et al. 2016).
El proceso durante el 2015 y
2016 utiliza varias herramientas
participativas y consultivas deplanificación espacial (como
SeaSketch, www.seasketch.org) y análisis de costo-beneficio(tradeoff en inglés) para acercar a
una ordenación de usos que cumple
mejor con las metas establecidas
en el Plan de Manejo de Buen Vivir
del DPNG. KBA o Key Biodiversity
Areas significa áreas considerados
claves por sostener niveles altos
de endemismo y biodiversidad
según Edgar et al. (2004). Ha sido
evaluado para integrar el manejo delespacio marino, costero y terrestre
en el 2016.

(B)

Edición por Stuart Banks 17

En el pasado, el manejo de los recursos en Galápagos, al igual que en otras partesdel mundo, se realizaba con un enfoque dirigido solamente a especies de interés;con base en cuotas, tallas mínimas de captura, períodos de veda para estadios
reproductivos y artes de pesca. Sin embargo, dicho esquema no ha sido muy efectivo
en la protección de los recursos. En parte, debido a la falta de reconocimiento de'cuellos de botella' en los procesos que entorpecen una gestión pesquera sostenible(y rentable según las expectativas del sector), además del incumplimiento de lasregulaciones bajo las presiones asociadas. Pero también, debido a la falta de una
información que respalde un manejo holístico y multiespecífico que considere elentorno en el cual habitan los recursos y el efecto que su extracción tiene sobre su
medio (Castrejón & Charles, 2013).
En 1998 se establece la Reserva Marina de Galápagos con el propósito de lograr laconservación y protección de la biodiversidad marina, garantizar la sustentabilidad
de las actividades económicas y normar y regular las actividades humanas(Dirección del Parque Nacional Galápagos & Fundación Charles Darwin, 1999). La
propuesta original de zonificación se basó en la creación de diferentes subzonasde manejo costero, diseñadas para separar los usos no compatibles y, a su vez,garantizar la protección de la biodiversidad marina mediante una adecuada
representación de las zonas no extractivas dentro de las diferentes regiones yhábitats existentes en el archipiélago.
Sin embargo, al momento de asignar dichas zonas se disponía de muy poca
información sobre los patrones de abundancia y distribución del hábitat y de las
especies. La primera redacción del esquema de zonificación (figura 1-2) refleja
las necesidades y compromisos negociados por cada sector de usuarios (guías
naturalistas, turismo, pesca artesanal, ciencia y conservación). Por lo tanto, fue
prioritario establecer una línea base de biodiversidad para poder guiar de mejor
manera la zonificación y, con base en esta información, establecer prioridades deconservación al identificar zonas sensibles y hábitats representativos de la RMG
de alta biodiversidad y endemismo, reevaluando así las regiones biogeográficas
propuestas por Harris (1966). Desde entonces, se desarrolló una serie de campañas
para levantar datos de campo con el afán de caracterizar las comunidades
submareales y entender mejor la manera en que estas cambian en el tiempo y elespacio (figuras 1-3 y 1-4).

Figura 1-3: Distribución del esfuerzo en
el monitoreo submareal entre 1994 yel 2014 a través de 1500 muestreos en
280 sitios. La altura de las barras indica
los sitios repetidos entre diferentes
campañas de campo. Los puntos
rojos indican sitios utilizados para
caracterizar la biogeografía (línea base),
mientras los sitios con barras amarillasazules indican sitios de diagnósticos
elegidos para seguir cambios en eltiempo.

18 Manual de Monitoreo Submareal

Figura 1-4: Esfuerzo de muestreo submareal en la zona costera (hasta 40 m de profundidad) entre 1994 y 2014 para cada grupo principal
taxonómico. Los transectos (*) son tramos de 50 m típicamente ubicados a 6 m y 15 m de profundidad en cada sitio monitoreado (**). El total de sitios
monitoreados (**) incluyen repeticiones entre estaciones y años. Figura 1-3 demuestra la frecuencia y distribución del esfuerzo de monitoreo.

Previo al diseño de cualquier tipo de monitoreo, fue necesario entender ladistribución de las especies en el espacio para asegurar la comprensión de lavariabilidad y diversidad de ambientes y comunidades en la RMG. El estudio de línea
base inició en mayo del 2000 y culminó en diciembre del 2001 con el monitoreo de
200 sitios aproximadamente. Los monitoreos se realizaron sobre fondos rocosos,
en parte porque este es el tipo de fondo marino más representativo alrededor delas islas (>80% hasta 40 m de profundidad), pero también porque constituye elhábitat principal para la mayoría de especies de explotación pesquera (ej. pepinosde mar, langostas y bacalao) y de atracción turística (ej. lobos marinos, tiburones,
pingüinos e iguanas).
El documento Línea Base (Danulat y Edgar 2002), describe los patrones deabundancia y distribución de especies, con una redefinición de las regiones
biogeográficas propuestas por Harris (ver Bustamante et al. 2002 y Edgar et al.
2004). Este documento constituye una herramienta útil para el manejo al identificaráreas sensibles altamente diversas o con un alto porcentaje de endemismo. Comosu nombre lo indica, dicho documento constituye el punto de partida para poderevaluar la respuesta de las comunidades submareales frente al esquema actual dezonificación. Los censos submareales de la RMG llevados por la FCD-Biomar, tras
los primeros ensayos y registros de la diversidad marina (1994-2000) para el Plande Manejo de 1999, fueron reevaluados en los años 2001 y 2004 para convertirse
en un componente de monitoreo y en parte del Sistema de Comanejo de la RMG(Banks et al. 2006; 2007; 2010; 2011; 2012;).
Al momento de demarcar físicamente las subzonas de manejo en la costa (pesca
permitida, turismo regulado y protección), una comisión técnica conformada por la
Junta de Manejo Participativo acordó en octubre del 2004, un mínimo de 64 sitios
diagnósticos por agrupaciones entre subzonas de manejo dentro de las regiones
biogeografícas de la RMG. Este fue un proceso con múltiples actores, liderado
por la DPNG y la FCD con varios grupos de expertos nacionales e internacionales(descrito en mayor detalle en el Informe final US-AID al DPNG, Banks et al. 2006;
2010, y el Informe Galápagos 2011-2012 por Luna et al. 2013). Después del 2006,
la FCD realizó la búsqueda de recursos financieros para mantener el monitoreo
con un costo de entre USD 60 000 a USD 80 000 por año.
Edición por Stuart Banks 19

Estrella de mar Heliaster cumingi yOphioblennius steindachner (Imagen: M. Vera)

A partir de octubre del 2004, se inició el censo anual, realizado en aproximadamente
22 días de buceo en el campo (entre febrero y junio). Como parte de la rutina
se registran las distribuciones de más de 500 especies submareales costeras
a través de los sitios elegidos por estudios de la Línea Base de la RMG entre
el 2000 y el 2004, aprobados por la JMP con el proceso descrito en Banks etal. (2006). Al principio, los monitoreos de biodiversidad se concentraron en tres
grupos taxonómicos: peces demersales, principalmente; invertebrados móviles;
y organismos sésiles; todos ellos expuestos a la superficie externa de la roca ydentro del rango de visibilidad de los buzos. Dada la necesidad de entender losfactores explicativos que condicionan la biología, después del 2004 agregamos
otros tipos de monitoreo utilizando y probando diversos métodos: oceanográfico,plancton, mesogastrópodos, pelágicos, mapeo vertical de hábitat, parcelas fijas
de corales y algas, y búsquedas dirigidas a especies comunes potencialmente
invasoras y amenazadas. Para entender mejor la variabilidad a través de losaños, varios proyectos se han enfocado en diferentes escalas en tiempo yespacio (figura 1-5).

El esfuerzo de muestreo para caracterizar las comunidades por cada grupo ha sido
considerable. Suma más de 7600 transectos de 50 m de largo estudiados por los buzos
científicos durante el periodo 1994-2014. Tal esfuerzo equivale a un total de ~380 km, donde
se han realizado los censos submareales.

Trambollo triple aleta, Lepidonectes corallicola(Imagen: M. Vera)

El esfuerzo de muestreo para caracterizar las comunidades por cada grupo hasido considerable. Suma más de 7600 transectos de 50 m de largo estudiados
por los buzos científicos durante el periodo 1994-2014. Tal esfuerzo equivale aun total de ~380 km, donde se han realizado los censos submareales (para tener
una idea más clara, equivale a bucear 4 veces, ida y vuelta, desde Santa Cruza Floreana) y es un desafío compartido y mantenido por más de 70 científicosmarinos desde 1994. En términos de tiempo bajo el agua, representa más de
4500 horas de buzo. No obstante, para poner en perspectiva el reto que supone
el monitoreo, a pesar de la altísima inversión en términos de cobertura, todos losesfuerzos representan <1% de la extensión de la costa de las islas. Tomando en
cuenta que la logística de buceo y navegación requerida normalmente está sujeta
a limitaciones presupuestarias, es importante asegurar que un monitoreo cuente
con un diseño experimental que pueda responder a preguntas claras y concisas.
Este incluye consideraciones de escala (espacio y tiempo) y representatividad enel diseño (especies claves, hábitats, procesos de interés, etc), además de proveer
el poder estadístico para sustentar las conclusiones.

El monitoreo se enfoca en el arrecife rocoso que domina >80% del hábitat submareal a menosde 40 m, el cual es la zona con mayor exposición a interacciones con usuarios de la RMG.
A pesar de que está descrito con mayor detalle en este mismo manual, vale la pena
resumir brevemente el trabajo de campo. Este está conformado por un grupo núcleo
de buzos técnicos (3-6 personas), normalmente de la FCD, más el/la oficial para lalogística y seguridad del buceo científico (1-2 personas). Más de la mitad del grupo
está compuesto por miembros de la comunidad local, y por lo general, cada salida
involucra una rotación de entre 1 a 3 voluntarios y estudiantes locales.

Dos equipos de buzos trabajan replicando muestras por sitio a 2 niveles de profundidad
estándar (15 m y 6 m). Cada bloque de muestra por profundidad está basado en un censo
visual calibrado entre observadores sobre una extensión lateral de 50 m.
El monitoreo se enfoca en el arrecife rocoso que domina >80% del hábitat submareal
a menos de 40 m, lo cual es la zona con mayor exposición a interacciones con
usuarios de la RMG. Dos equipos de buzos trabajan replicando muestras por sitio
a 2 niveles de profundidad estándar (15 m y 6 m). Cada bloque de muestra por

20 Manual de Monitoreo Submareal

Figura 1-5: Escala espacial y temporal del aporte de la ciencia realizada en la RMG (Banks et al., 2012).

profundidad está basado en un censo visual calibrado entre observadores sobre
una extensión lateral de 50 m. Cada grupo de buzos entrenados y especialistas en
grupos taxonómicos toman datos de diversidad, abundancia, peces de arrecifes
por tallas (2 x 250 m2), macroinvertebrados móviles (20 x 5 m2), cobertura deorganismos sésiles por cuadrantes con puntos de intercepción (10 x 81 puntos en
0.25 m2) y mesogastrópodos <2cm de largo (10 x 0.25 m2). Al mismo tiempo, todos
los observadores tienen la oportunidad de registrar especies o avistamientos
novedosos o relevantes.

Desde el 2004, los métodos de censo visual desarrollados en Galápagos han sido mejorados
y aplicados a monitoreos comparables dentro de otras reservas nuevas en Ecuador, al nivel
del Pacífico Este Tropical (PET).
El perfil de buceo que se aplica está diseñado para reducir en lo posible laprobabilidad de problemas de acumulación de nitrógeno y se cuenta con un oficial
de seguridad antes, durante y después de los trabajos. Desde el 2004, los métodosde censo visual desarrollados en Galápagos han sido mejorados y aplicados amonitoreos comparables dentro de otras reservas nuevas en Ecuador, al nivel
del Pacífico Este Tropical (PET) mundial, e incluso adaptados para programas
complementarios de ciencia ciudadana marina (Edgar et al 2014).

Edición por Stuart Banks 21

En el monitoreo se aplican fotocuadrantes en una selección limitada de sitiosde parcelas fijas y se realizan perfiles oceanográficos con el instrumento CTD(conductividad-temperatura-profundidad) y toma de plancton (red 335 um) para
caracterizar las condiciones particulares asociadas con cada muestreo. Los
datos satelitales sobre temperatura, productividad y otros factores, se analizan
por separado para averiguar cambios climáticos en la superficie de la región dela RMG, en conjunto con los registros detallados de series de tiempo recopilados
en las estaciones oceanográficas instaladas en Wolf, Fernandina y en la Estación
Meteorológica de la ECCD en Santa Cruz.

Nudibranquio, Tambja mullineri(Imagen: R. Gallardo)

El diseño del estudio permite caracterizar detalladamente comunidades enteras
que incluyen especies claves categorizadas (ej. especies metas para pesqueras,
especies de interés para el turismo, formadores e ingenieros de hábitats,indicadores, etc.). Asimismo, nos permite averiguar índices más informativos
sobre la estructura y la configuración de las comunidades bajo sus regímenes
ambientales. Estos índices comunitarios, en combinación con estimaciones
de biomasa y observaciones de comportamiento recopilados en otros estudios(rasgos funcionales o functional traits and behaviors), nos informan más sobrelas funciones ecosistémicas y procesos ecológicos y brindan estimaciones máscontundentes sobre los elementos que juegan un papel importante en la resiliencia
frente a una posible degradación.
La dinámica del ensamblaje de especies con diferentes proporciones relativas
de abundancia y biomasa es lo que afecta a las mismas especies claves,tradicionalmente monitoreadas de manera aislada. Este tipo de monitoreo incluye
información sobre la estructura poblacional que complementa otros estudios
para las especies que consideramos prioridades de conservación; pero también
reconoce que lo que define un ecosistema como complejo es la suma de lasconexiones y el condicionamiento, y que la sobrevivencia de muchas especies
en peligro depende, en gran medida, de las dependencias y la competencia condiferentes niveles de fuerza y conectividad entre otras partes del sistema.

Caballo de mar, Hippocampus ingens(Imagen: R. Gallardo)

Estrella de mar, Pentaceraster cumingi(Imagen: R. Gallardo)

Los insumos para evaluar los aspectos del diseño de un área protegida marina
bajo un régimen sostenido de manejo, normalmente se consideran más útiles (conpatrones más confiables y evidentes) tras décadas de recopilación de datos. Esto es,
en parte, por la necesidad de capturar de una mejor forma el rango de variabilidad
biológica natural y la respuesta de comunidades frente de eventos muy cálidos o fríoscomo El Niño y La Niña; y por la evaluación de tendencias vinculadas con el ciclo demanejo, niveles de extracción pesquera y otras actividades antropogénicas (directas
e indirectas). Los trabajos para caracterizar la RMG han dado como resultado una
base de 10 años de datos colectados de forma sistemática desde el 2004 con puntos
de referencia desde 1994 hasta el 2000 y una línea base de la RMG comprehensiva
llevada a cabo en el 2001. La figura 1-4 muestra el esfuerzo del muestreo por grupo,
monitoreado desde los primeros registros submareales 1994-2014.
A pesar de que un diseño experimental debe variar de acuerdo con las preguntas,
los métodos descritos de los censos visuales de las comunidades submareales
principales ofrecen datos comparables con el tiempo. El afán por mantener una
consistencia entre años de datos levantados durante estos monitoreos ha sido larazón fundamental por la cual se ha creado esta guía.
Coral solitario de copa, Tubastraea coccinea (Imagen: R. Gallardo)

22 Manual de Monitoreo Submareal

Tiburón tintorera, Triaenodon obesus (Imagen: R. Gallardo)

Objetivos delmonitoreo submareal
El objetivo principal del programa de monitoreo ecológico 1997-2014, fue brindar
información sobre el estado de la biota asociada a los fondos rocosos duros ydeterminar la naturaleza y magnitud de sus fluctuaciones a través del tiempo y elespacio.
Ahora, el reto es evaluar la respuesta biológica frente a los factores ambientales
y antropogénicos mediante el seguimiento e investigación a largo plazo de labiodiversidad, la composición y el funcionamiento de los sistemas marinocosteros. La línea base y el monitoreo fueron creados y mantenidos para brindar
información relevante para un mejor entendimiento y conservación de la RMG.
“Incrementar e incorporar el conocimiento científico interdisciplinario sobre
los ecosistemas y la biodiversidad de Galápagos, particularmente dirigido
a la caracterización de los procesos biofísicos esenciales que determinan su
integridad ecológica y resiliencia con especial referencia a su capacidad degenerar servicios para el Buen Vivir de la sociedad.”Plan de Manejo del DPNG 2006 (sec. 5.1)

2
"Promover el funcionamiento
de un sistema de manejo
adaptativo y participativo delParque Nacional y de la Reserva
Marina, en el que se utilice elmejor conocimiento científico
disponible para la toma dedecisiones, de forma que sepuedan realizar ajustes a losobjetivos de manejo de acuerdo
con la realidad socioeconómica
y ambiental del archipiélago".
Resolución No. 0046
Estatuto Orgánico de Gestión
Organizacional por
Procesos DPNG

Este propósito sigue los lineamientos descritos originalmente en el Plan de Manejo
de la RMG 1999 –el mismo que constituía un deber de la ECCD en aquel tiempo– yha sido adaptado en revisiones posteriores para responder a nuevas inquietudes
y cuestiones de manejo en la zona submareal de la reserva. Desde el 2006 se
produjo un proceso de reforma al Plan de Manejo del DPNG con la finalidad de unir
la normativa entre los ámbitos terrestre y marino, además de cambiar el enfoquedel marco de manejo hacia un manejo ecosistémico más holístico, y de conservar
hábitats y servicios ecosistémicos por su importancia para mantener el buen vivirde la comunidad local y nacional. La información levantada por técnicos de la ECCD
desde 1994 ha sido aplicada en múltiples foros en la formulación de propuestas
y en la posterior evaluación del sistema de zonas de manejo y estimaciones deriesgo para la RMG (ver figura 2-1).

Edición por Stuart Banks 23

Figura 2-1: Ejemplos de las contribuciones del monitoreo ecológico de la FCD a procesos de entendimiento, concientización y manejo de la RMG.

24 Manual de Monitoreo Submareal

Caracterización de sistemas biofísicosde la Reserva Marina en el espacio y tiempo,
sujeta a los regímenes de uso humano
Abarcando 133 000 km2 de aguas abiertas y unos 1670 km de costa, la RMG estásujeta a algunas de las más fuertes perturbaciones climáticas en el mundo y,como sugiere su nombramiento como Patrimonio Natural de la Humanidad porla UNESCO 'Hombre y Reserva de la Biosfera', alberga una población humana de
un tamaño considerable que convive con el área manejada. Está implícito que
los usuarios de la RMG interactúan diariamente en la zona protegida con losresponsables del manejo del lugar, residentes y turistas. Dadas las condiciones,las influencias pueden ser directas, indirectas, puntuales o crónicas. Un evento
puntual que requiere información referencial podría ser un derrame de petróleo
como lo ocurrido con el M/N Jessica en el 2001. Tendencias a lo largo del tiempo
incluyen ejemplos como la dinámica de las temporadas de pesca, la recuperacióndel lecho de mar por el uso de anclas fijas o el efecto de un régimen de manejo,
como la zonificación costera sobre escalas que varían de años a décadas.
El ofrecer un respaldo a los servicios valorados que brinda el ecosistema, dependetanto de la protección de la estructura y función de los ecosistemas como de lacomprensión biofísica, social e institucional de sus vínculos internos y externos. A
pesar de que los primeros programas de la FCD en ciencias naturales se enfocaronen especies emblemáticas, la gestión de la ciencia marina desde los 90 demandó
un enfoque más holístico y dio lugar a una línea de investigación basada en el
ecosistema. El levantamiento de información inicial se ha concentrado en la
caracterización de las comunidades submareales con atención en los patrones declima, oceanografía, ambiente productivo, rol funcional de las especies, hábitats,dependencias y procesos ecológicos de mayor importancia para la pesca artesanal,
el turismo, la ciencia y la educación.
En los últimos años, la línea base biológica sigue siendo complementada con
información sobre escenarios para una economía sostenible y una cierta calidad
de vida o 'buen vivir'. En este sentido, el trabajo interdisciplinario entre grupos deinvestigadores en ciencias naturales y sociales es clave para brindar relevancia ycontexto entre el recurso y el usuario. De la misma manera, es fundamental proveer
puentes de acceso a la información para las instituciones públicas, lo cual beneficia
el fortalecimiento institucional y el manejo de la RMG respaldado con conocimiento.
A pesar del progreso en la investigación desde la década del 70, es un gran desafío
el caracterizar y monitorear los sistemas naturales, los servicios ambientales que
proporcionan y los índices de la huella humana, en relación con la escala de la reserva
y las necesidades de sus usuarios.

(Imagen: A. Camacho)(Imagen: CC-FDC)(Imagen: S. Banks)(Imagen: A. Schubauer)

Edición por Stuart Banks 25

Diferentes fuentes de información biofísica combinadas con los datos delmonitoreo submareal respaldan las líneas de investigación y las actividades
asociadas aplicadas en la RMG (tabla 2-2). Los ejes centrales del programa son :I. Desarrollo de un sistema de observación, monitoreo y alerta temprana para
la RMG (con elementos de coordinación interagencia y ciencia ciudadana).
II: Definición y validación de los hábitats y servicios ecosistémicos como objetos
de conservación y sus tendencias en el tiempo.
(Imagen: CC+ FCD-Biomar)

III. Determinación de la biogeografía, zonas sensibles para grupos ecológicos submareales costeros y de aguas abiertas y distribución de especies amenazadas.
IV. Monitoreo anual de cambio ecosistémico en la franja costera con énfasis en la
generación de índices de cambio por sitios de diagnósticos de arrecife rocoso.
V. Revisión de la eficacia, representatividad y compatibilidad del diseño de laRMG, según sus metas acordadas con la entidad manejadora y con cadausuario sectorial (pesca, turismo, educación, ciencia).
VI. Exploración de escenarios climáticos y de uso antropogénico por medios demodelaje (tróficos/energéticos, conectividad oceánica, optimización espacialde uso, análisis de redes, etc.).

(Imagen: A. Schubauer)VII. Caracterización y modelaje de sistemas socio-ecológicos (cadenas decausalidad y efecto, expectativas de los usuarios y funcionarios de la RMG,
sus interrelaciones y dependencias).
VIII. Capacitación de voluntarios y tesistas de licenciatura, con posibilidad de MSc
o PhD con colaboradores externos. Capacitación de funcionarios del DPNG,ABG e INOCAR.
IX. Actividades de extensión (outreach) y educación ambiental (como el paquete
didáctico FCD-CI 'Ciencia a la Acción', en el 2010) entre los responsables detoma de decisiones y los usuarios de la RMG.

(Imagen: CC+ FCD-Biomar)

Vale la pena destacar que la formación de nuevos investigadores jóvenes, comofuturos custodios de la RMG, ha sido una inversión sumamente valiosa del ÁreaMarina de la FCD durante los últimos 15 años. Jóvenes profesionales de la ECCD
ahora trabajan en diversos puestos en universidades y en el sector público. Se
han convertido en voceros de la comunidad local para un uso bien informado,
inteligente y sostenible de la RMG.
(Imágen: G. Edgar)

26 Manual de Monitoreo Submareal

Hábitats, comunidades y especies

Climatología/ oceanografía (local y mesoescala)Tabla 2-2: Fuentes principales de información biofísica aplicadas a las líneas de investigación para la RMG por parte de laFundación Charles Darwin (FCD) (gestión de pesca y turismo se han omitido pero están disponibles en la DPNG y la FCD).
Descripción de datos

Dominio espacial

Resolución temporal

FuenteRegistro meteorológico FCD

Sitio fijo en Puerto Ayora, SantaCruz.

3 medidas diarias.
1964-presente.

FCD- Rea

Datos de sensores remotos satelitales(NASA-SeaWiFS, NASA-MODIS- AQUA, Región de Galápagos [2N x 2S,
NOAA-AVHRR etc.), productividad,
91O x 89O].
temperatura, etc.

NASA-FCDProductos multianual, varias
Banks Proyecto
resoluciones. 1998-presente.
NASA-Ocean

Southern Oscillation Index (SOI)+ Multivariate ENSO Index (MEI)
Series para la región EN3.4 e índicesgeoespaciales de estrés ambiental y
ENOS para la RMG (Banks).

Regiones: EN 3.4 región y EN 1+2
y a 1.1 a 4 km2 resolución en lazona costera por la región de la
RMG. (las zonas diagnosticosde El Nino (EN) designado por la
NOAA estan en Figura 15.1)

1950-presente (región).
2002-2013 (local). Datos deboyas y satelitales aplicados
semanal y mensualmente.

NOAA / NWS /CPC / KAPLAN /NCEP/ CIFEEN/
FCD-Banks

Cruceros oceanográficos FCD-DPNG
2004-2007 (profundidad de isotermas,
temperatura, salinidad, orgánicosdisueltos, fitoplancton, zooplancton,etc.) + datos de cruceros bianuales de
INOCAR.

>60 sitios fijos de perfiles
verticales en aguas costeras
y abiertas a través de tramosde 1500 m de muestreo
continuo, más de 18 estaciones
oceanográficas in situ a
profundidades entre 10 m y 20 m.

5 cruceros estacionales(caliente, frio y transiciones)
2004-2007 + cruceros
anuales de INOCAR desdelos 70.

DPNG, UNCW,
NCSU, INOCAR &FCD-BanksBase de datos FCD-DPNG de anidación
Cuatro playas de anidaciónde tortuga verde, + tagging, marcaje y(Isabela sur y Santa Cruz).
recaptura.

Estacional Diciembre-Mayo.

FCD-DPNG
Zarate/ Parra

FCD base de monitoreo de cetáceos ypinnípedos (Salazar 2007).

Censo poblacional por colonias
principales.

1998-2008 censo estacional
FCD-Salazar
poblacional.

FCD-DPNG base de datos demonitoreo de pingüinos y cormoranes,
aves marinas, flamingos.

Varios; censo poblacional entrecolonias de pingüinos en Isabela
oeste, Fernandina y Floreana.

1970-2014 censo anual depingüinos. Varían entre lasaves marinas.

FCD-DPNG
Vargas, Jimenez

FCD base de monitoreo de iguanas
marinas.

Punta Nuñez, Santa Cruz.

1997-2006 censo mensual.

FCD-Marquez &LlerenaFidelidad de sitio para tiburones ycensos pelágicosSitios específicos - Wolf, Darwin,
Cabo Marshall, archipiélago
central.

Datos discretos de censo,
tagging y telemetría.
2007-2013

FCD-Hearn,
Peñaherra,
Acuña

Muestreos de hábitats profundos>40 m a 2500 m. Por cruceros
internacionales y submarinos.

Todo el archipiélago

2007+ según oportunidadesde cruceros.

DPNG/ INOCAR/FCD-Banks

FCD base de datos submareal(4 grupos de taxa; peces,macroinvertebrados móviles, sésiles,
mesogastrópodos y algas).

A nivel de toda la RMG por >280
sitios en tramos de 50 m por
2 profundidades (15 m y 6 m)
representando >1500 muestras(>2800 transectos de 50 m).

1994-2014 anual.
>64 sitios han sido
monitoreados cada año
desde el 2004 al 2014 entre
las distintas bioregiones.

FCD-Banks

FCD matriz de sensibilidad de especies,
hábitats y procesos considerados
Archipiélago.
vulnerables (incluyendo especies
invasoras marinas).

En revisión cada año 2009+

CI-FCD-Banks
datos de la Lista
Roja de la IUCN
para algas ycorales

Mapeo de hábitat vertical por la RMG
semicuantitativo a 40 - 2 m.

Archipiélago (110 sitios).

2004-2007

Edgar-National
Geographic;
FCD-Banks

Datos del crucero de exploración
profunda para 'kelp' (alga).

Hábitat especifico de 'kelp' en
Fernandina e Isabela oeste.

2007

MLML-FCD
Banks

Edición por Stuart Banks 27

Cuestionamientos sobre sostenibilidad
Los datos de los censos de comunidades submareales desde el 2004 figuran enel análisis de cambios en el tiempo sobre la zona costera y corresponden a una
serie de preguntas acerca de la dinámica de la RMG y del diseño de áreas marinas
protegidas en general. Tal información biofísica, conjuntamente con índicessociales, culturales y económicos, sirve como parte de la evaluación del estado
actual y del desempeño de la RMG. Es muy aconsejable tener una visión clara
sobre lo que queremos comprobar con un diseño experimental:(Imagen: Jorge Ramírez)• ¿Cuáles son las tendencias interanuales y estacionales de los objetos deconservación priorizados para la RMG?
• ¿Cómo han respondido las comunidades en los sitios monitoreados al sistema
actual de zonificación costera? ¿Existe evidencia de los efectos positivos de las
areas marinas protegidas (Spill-over, estructuras, poblaciones saludables, etc.)?
• ¿Qué índices geoespaciales biofísicos extraídos de los monitoreos submareales
son los más informativos y relevantes para mejorar los escenarios y modelosque llevarían a posibles reformas en la zonificación costera de la RMG, con losresponsables de la toma de decisiones y los usuarios?
• ¿Cuáles son las especies endémicas y nativas, hábitats y procesos submareales
expuestos a un mayor riesgo de extinción y/o degradación? ¿Cuáles son lascausas y qué acciones podrían mitigar tales riesgos?
• Tomando en cuenta la zonificación actual (que tiene un marco legal vigente
desde 1999, demarcada hace unos 7 años y socializada desde el 2005-2006),¿Cuáles son escenarios para la reforma de la zonificación costera que ayudarían
a fortalecer las metas del Plan de Manejo Integrado para el Buen Vivir?.
• ¿Qué aspectos institucionales y de la sociedad (gobernabilidad, conflicto
entre usos, temas de distribución de los beneficios y mercados, costos yventajas para la vigilancia marítima, etc.) tienen una mayor influencia sobre el
condicionamiento natural de la Reserva?
La información también se aplica a investigar cuestiones acerca la sostenibilidad
de recursos marinos a largo plazo en la RMG y las conexiones entre áreas marinas
manejadas en el Pacífico Este Tropical.

(Imagen: H. Lugo)(Imagen: A. Camacho)

28 Manual de Monitoreo Submareal• ¿Cómo definir mejor y priorizar los objetos de conservación en la RMG entiempo y espacio según su nivel de riesgo, necesidades y valoración delsector público y privado entre el 2014 y el 2020?
• ¿Qué tipo de riesgos y oportunidades existen en la interacción entre lasperturbaciones antropogénicas (como extracción de recursos pesqueros)y la variabilidad climática (ENOS/Oscilación Decanal del Pacifico (ODP) y
global)?
• ¿Cómo integrar elementos de adaptación frente la inevitable dinámica deeventos ENOS fuertes y a la incertidumbre presentada por el cambio climático en el diseño de la RMG?.
• ¿Qué índices (algoritmos) derivados de los ensamblajes de especies, grupos
funcionales y derivativos de índices oceánicos serían más informativos e
indicativos para estimar la resiliencia y resistencia de componentes de la
RMG frente a perturbaciones a escalas relevantes por procesos en la RMG?
• ¿Cuáles son los puntos detonantes en la configuración de comunidades
submareales tras los cuales los sistemas naturales experimenten una
degradación o colapso en su estado, impactando en la productividad, ladiversidad, los servicios ecosistémicos brindados a los usuarios, etc.?
• ¿Cuáles serían las condiciones necesarias para facilitar la recuperaciónde las comunidades en las zonas santuarios de la RMG, parecidas a lasconfiguraciones productivas reportadas antes de las perturbaciones fuertes(ENOS combinado con índices altos de extracción) entre 1980 y el 2000? Ladominancia de los erizos observada en los últimos 30 años, por ejemplo, ¿esreversible? ¿a qué escala?

¿Por qué continuar con un monitoreo
de las comunidades submareales?
De acuerdo con el plan de manejo de la RMG (1999), el esquema de zonificación
provisional quedó pendiente de evaluación luego de un período experimental desolo dos a cuatro años. Este proceso se ha alargado debido a varios motivos,
entre ellos, la gran atención a los asuntos pesqueros que ha dedicado la Junta
de Manejo Participativo JMP, la demora en señalizar físicamente las subzonas demanejo en la costa y el mismo proceso de reforma del Plan de Manejo de la DPNG.
Una consultoría con la DPNG, para la evaluación del Plan de Manejo por Hockings
et al. en el 2010, avanzó en este proceso prestando atención a aspectos degobernabilidad y mejoras en la logística para fortalecer el área manejada. Se
consideraron los efectos ecológicos, sociales y económicos hasta la fecha. Porlo tanto, es sumamente importante dar continuidad y consistencia a este procesode evaluación del estado y la respuesta de los recursos naturales de la Reserva
Marina que se inició con el establecimiento de la Línea Base de la Biodiversidad.
Uno de los principales limitantes del estudio de la Línea Base de la Biodiversidad
Marina fue la escasa representación temporal del monitoreo. En general, es bien
sabido –luego de estudiar otras APMs a escala mundial– que beneficios comola protección de la biodiversidad y la rentabilidad pesquera en zonas adyacentes
normalmente requieren un mínimo de 10 años para evidenciarse en la zonacostera. Los monitoreos, inclusive, deben tomar en cuenta los extremos y el rango
de la señal climática para la región, lo cual en Galápagos es representado por loseventos fuertes de ENSO (La Niña y El Niño) que han afectado a las islas con mayor
incidencia en ciclos de 8 a16 años.
El actual diseño de zonificación, con múltiples áreas grandes y pequeñas, brinda
una oportunidad única a escala mundial para experimentar y comprobar laeficiencia de su funcionamiento con áreas de distinto tamaño. En este sentido, con
un diseño de muestreo adecuado, se pueden detectar los cambios o tendencias
que se podrían producir dentro de dichas zonas (ej. cambios en la diversidad,
dinámica poblacional, funcionamiento del ecosistema, etc.), proveyendo, de estemodo, las bases técnicas para mejorar su diseño y aplicación.

(Imagen: CC+ FCD-Biomar)(Imagen: CC+ FCD-Biomar)(Imagen: CC+ FCD-Biomar)(Imagen: CC+ FCD-Biomar)

Edición por Stuart Banks 29

Como se mencionó anteriormente, esto ha servido (figura 2-1) para detectar
problemas potenciales y responder a imprevistos de forma proactiva; comoen el caso de especies invasoras marinas. Incluso, ha generado foros para
extender las técnicas de monitoreo de forma comparativa a otras APMs nuevas
en la costa de Ecuador y el Pacífico Tropical Este. También ha sido incluido en el
análisis de desempeño de reservas a escala mundial dentro programas de Marine
Management Area Science y Reef Life Survey (Edgar et al. 2014).
El costo de mantener una red de monitoreo mínima representativa está estimado
en alrededor de USD 80 000 por año. Dicho costo resulta relativamente modesto
si se considera la importancia de la RMG y las inversiones anuales del Estado yde los sectores productivos en beneficio de los recursos y la calidad de vida de lacomunidad local.

(Imagen: G.Feldman/NASA)

Aunque es un beneficio adicional, y no el enfoque del programa, el monitoreo brinda
una oportunidad para un mejor uso del tiempo en el campo entre una variedad
de proyectos de investigación marina. Por su parte, esto ofrece oportunidadesúnicas para la capacitación de nuevos biólogos marinos locales y nacionales. Los
comentarios de ex estudiantes han reiterado que la motivación al apreciar el entorno
submarino en persona, dentro la temática de la ciencia para la conservación, hasido clave en su formación. Además, cada 2 años, más de 500 guías naturalistas
han recibido cursos de investigación marina de la FCD, la mayoría de los cuales se
han basado en este programa.
En términos de las exigencias para el buceo científico, como se describe en este
manual, cualquier trabajo en el campo de buceo requiere de disciplina y de un
régimen indiscutible de seguridad, lo cual ha permitido el desarrollo de un protocolo
estándar como requisito para los trabajos de la FCD con sus socios en la RMG a
través de este programa (ver sección 5) .

(Imagen: G.Feldman/NASA)

Cuadrante para monitoreo de sesiles(Imagen: M.Vera)

30 Manual de Monitoreo Submareal

Las diferentes fases del monitoreo se han enfocado en diferentes escalas de tiempoy espacio. Primero, se concentró en la caracterización de la biogeografía (Línea
Base de la RMG 1999-2002); luego, en los cambios estacionales (proyecto Pew
Floreana 2000-2003) y anuales (proyecto Sielmann Norte, SE y Oeste 2001-2003);
y desde el 2004 al 2014, contamos con el primer registro comparativo de 10 años
plurianual. A partir del 2015, como parte del proceso de reformas a la zonificacion
costera y marina (aguas abiertas), los intervalos y enfoque de monitoreo deben
ser evaluados de nuevo, de acuerdo con una revision de objetivos en conjunto con
la DPNG. Este proceso se ha iniciado con la conformacion de un red informal deexperto marinos.
Finalmente, hasta el 2014, el equipo marino de la FCD (Biomar) se había mantenido
con un financiamiento propio; infraestructura, experticia y coherencia de unprograma con longevidad necesaria para monitorear cambios entre años y ponerlas observaciones en el contexto de nuevos sucesos –desde tsunamis hasta
el cambio de clima– y novedades en el desarrollo de la huella humana de lasislas. Gracias al mantenimiento de este eje central, ha sido posible la detección,
representación y concientización de la biodiversidad submareal con una revisión
rutinaria de la salud de los hábitats costeros y estudios sobre la viabilidad de losservicios ecosistémicos brindados por la RMG.

Punta Vicente Roca, Isabela (Imagen: S. Banks)

Selección ycaracterización de sitios
de diagnóstico

3

Hasta el 2014, al rededor de 380 sitios submarinos costeros han sido monitoreados
por buzos que se han sumergido hasta 40 m de profundidad para mejorar la Línea
Base de la RMG. Estos monitoreos han brindado información sustancial sobre las
distribuciones de las comunidades submareales de los sitios y cada año se pretende
extender esta cobertura. Los detalles de cada sitio han sido documentados dentro
de la base de datos submarinos de la FCD.
Una selección de ellos ha sido utilizada para averiguar cómo cambian los sitios
en lapsos de horas, semanas, meses, estaciones y años. Esto ha servido en años
anteriores para averiguar la heterogeneidad de comunidades en el espacio y eltiempo y para comprobar las metodologías y el poder estadístico necesario paraabarcar más del 90% de la diversidad y detectar posibles cambios.
Es evidente que, debido a las demandas logísticas, un monitoreo anual supondría
un equilibrio entre una mayor representatividad de la cobertura de los sitios con
menor repetición (representatividad en espacio) a través del tiempo y una mayor
repetición de los sitios a través del tiempo con una reducida cobertura espacial.
En cada escenario, una respuesta mínima de muestreo en cada localidad ha sido
el factor determinante para asegurar un nivel adecuado de error estadístico paradetectar cambios.

(Imagen: M. Vera)

Para cumplir con los objetivos del monitoreo, se decidió que la unidad mínima demuestreo debe ser estacional (i.e. por lo menos una vez en temporada caliente
definida por la tempertura de mar (feb-abril), y si la logisitica lo permite, tambien
comparaciones en la temporada fria), con sitios entre las 3 subzonas de manejo,
replicados al menos dos veces y dentro de un área representativa de 500 m en
cada una de las 5 regiones biogeográficas. Esto disminuye el margen de error
estadístico y garantiza una mayor cobertura para comparaciones entre regiones,
subzonas y, al mismo tiempo, permite la generación de índices sobre patrones
poblacionales y de comunidades en los puntos individuales diagnósticos, haciendo
posible la comparación de tendencias.

Edición por Stuart Banks 31

En el 2004 se llevó a cabo un proceso, liderado por la DPNG, con los actores de la
RMG y con el soporte de varios socios, a través de la Junta de Manejo Participativo,para señalizar físicamente las subzonas de manejo costero. Al mismo tiempo, fue
posible trabajar en conjunto con los sectores de la JMP para aclarar las diferentes
interpretaciones del acuerdo original de la zonificación de 1999 y hacer explícitaslas delimitaciones geográficas para su futuro manejo.
Uno de los resultados de este proceso fue el diseño de un monitoreo submareal
anual de la RMG, basado en repeticiones de 64+ sitios diagnósticos marino-costeros,acordado en el Acta de la JMP Comisión Técnica ZPC 21-10-04 (figura 3-1 y 3-3A/B).

Figura 3-1: Distribución de lasagrupaciones de sitios seleccionadospara el monitoreo ecológico submareal
2004-2014. *Sitios adicionales (enorden de preferencia) fueron incluidos
en el monitoreo en lo factible según losrecursos disponibles por año.

Figura 3-2: Criterio aplicado para laselección de sitios diagnósticos parael periodo 2004-2014. Mayor detallede las selecciones realizadas por la
comisión de zonificación de la JMP hasido descrita en Banks et al 2006.

32 Manual de Monitoreo Submareal!

NORTE LEJANOREGIÓNBIOGEOG.

Tabla 3-3A: Grupos de sitios seleccionados para el monitoreo ecológico submareal (basado en subzonas de zonificación 1999-2015).
Agrupaciones marcadas (*) representan sitios adicionales.
2.3 Conservación,
2.2 Conservación yextractivo y no
uso no extractivo
extractivo(grupo uso turismo)(pesca)Isla

Sitiosagrupados

Wolf

Wolf

Bahía Tiburón(Corales 1 y 2)

El Derrumbe(Colonia de lobos
norte y sur)Fondeadero oeste(Wolf fondeadero
1 y 2)

DarwinNo existe ninguna
subzona deprotección en
DarwinArco de Darwin(Arco de Darwin)

Fondeadero(Darwinfondeadero norte
y sur)

Genovesa

Cuernos sur afuera
Bahía Darwin(Protección este yoeste)

Dentro de la Bahía
Darwin(Pared norte y este)

Fondeaderopesquero noroeste(Fondeaderonoroeste, norte ysur)Marchena

No existe ninguna
subzona deprotección en
Marchena o Pinta

Punta Espejo(Roca e Islote
Espejo)Punta Calle(P. Calle oeste y
este)

Punta
VicenteRoca

Punta Vicente Roca Punta Vicente
Punta Vicente(PVR Protección
Roca (PVR Turismo Roca1 y 2)
1 y 2)(PVR Pesca 1 y 2)

DarwinNORTEGenovesa

Marchena

OESTE

2.1 Comparación yprotección(grupo protección)

Playa Negra
Tagus

Playa Tortuga
Negra (P. T. Negra
1 y 2)

Caleta Tagus(Caleta Tagus
turismo 1 y 2)

Sur de Caleta
Tagus(Caseta PNG 1 y 2)
Los Cañones
(Los Cañones
1 y 2)

Punta
MorenoPunta Moreno(Protección 1 y 2)

Punta Moreno(Turismo 1 y 2)

Punta Moreno(Pesca 1 y 2)

Las
Marielas *Las Marielas(Protección)Las Marielas(Turismo)

Las Marielas(Pesca)CaletaIguana *No existe

No existe

Caleta Iguana(1 & 2)IsabelaComentarios
Agrupados alrededor dehábitats de coral sensible. El
monitoreo de estas pequeñas
islas del norte es sumamente
importante por su alta riquezaen especies de carácter IndoPacifico / Panámico, corales y elincremento de la intensidad deuso turístico de buceo.
Estos grupos forman una
subzona biogeográfica distinta
de aquella del lejano norte y demezcla al sur. Particularmente,
B.Darwin es un fondeadero dealto uso en una bahía con flujo
restringido. Punta Espejo cuenta
con un hábitat único de corales
en la RMG.
Los afloramientos fríos deloeste soportan altas tasas deendemismo, hábitats de macroalgas y especies adaptadas
a aguas frías que no seencuentran en ninguna otra
parte del archipiélago. Por otrolado, presenta una extracciónde biomasa 10 veces mayor
y de producción primaria quedesaparece durante los eventos
climáticos fuertes (El Niño).
Cinco agrupamientos de lossitios de monitoreo cubren elárea extensa.

La selección de los sitios representativos persigue una serie de criterios discutidos
en detalle en el foro de la comisión de zonificación de la JMP conjuntamente con
expertos externos en APM’s (figura 3-2). El análisis de los datos históricos y lapriorización de los criterios de selección dieron como resultado una lista de sitios(y agrupamientos de sitios) candidatos, los cuales están listados en tabla 3-3A y B.
Incluso se realizaron jornadas de trabajo de campo con inmersiones dedicadas solo
al monitoreo de salud de los corales hermatípicos en ciertos sitios, investigaciones
dirigidas a especies amenazadas y poco comunes, búsqueda de especies invasoras
potencialmente problemáticas y un mapeo del fondo marino de los formadores dehábitat a profundidades uniformes y con transectos verticales. Las metodologíaspara estos monitoreos también están descritas en este manual.
Cada sitio ha sido caracterizado por el tipo de substrato, el acercamiento en lasuperficie, los formadores de hábitat predominantes, la pendiente, las corrientes
típicas y el rango de oleaje (si son relativamente estables, muchas veces son
impredecibles) y los detalles sobre precauciones de seguridad para la inmersión,con indicaciones sobre el perfil del transecto y la mejor manera de colocar el punto
de inicio y final del mismo. Estos datos han sido actualizados y mantenidos en labase de datos submarinos en la tabla de 'Site'.

Edición por Stuart Banks 33

Central / Sur-este

OESTEREGIÓNBIOGEOG.

Tabla 3-3B: Grupos de sitios seleccionados para el monitoreo ecológico submareal (basado en subzonas de zonificación 1999-2015).
Agrupaciones marcadas (*) representan sitios adicionales priorizados por la presencia de especies endémicas, formadores de hábitat como macroalgas o para extender la cobertura del monitoreo si existen recursos.
2.1 Comparación yprotección(grupo protección)

2.3 Conservación,
2.2 Conservación yextractivo y no
uso no extractivo
extractivo(grupo uso turismo)(pesca)Punta
Espinoza

No existen
subzonas 2.1 cerca
de Punta Espinoza
en Fernandina

Punta Espinoza(norte) Turismo(P.Espinoza N1 y
N2)"

Punta Espinoza(sur) a Punta
Priscilla(P.Espinoza sur1 ysur2) (P. Priscilla1 y 2)

Cabo
Douglas *Cabo Douglas(surorste)(Limite Protección)

Cabo Douglas(Turismo)(Piedra blanca yCabo Douglas 1)

Cabo Douglas(este) (Limite
Pesca)

Santiago

Santiagoeste

Este de la costa deSantiago(Bahia Sullivan y El
Muerto)Roca Cousins y
Bartolome(Cousins y
Bartolome)

Noreste de lacosta de Santiago(Santiago Noreste
1 y 2)

Española

Bahia
Gardner

Bahía Gardner (sur) Gardner Turismo(B. Gardner Sur y(Isla Gardner norte
Cerro Colorado)y Bajo Gardner)

Bahía Gardner(norte)(Bahia Gardnernorte 1 y 2)

Floreana
norte

Costa frente deChampion hacia
Corona del Diablo
Punta Cormoránnorte y sur(P. Cormorán y Tres
Cuevitas)

Punta Luz del Día(Pesca) (P.Luz delDia y PLD Este)

Floreana
oeste yeste *

Las Cuevas (norte)(Protección)

Islote Champion/
EnderbyLas Cuevas (sur)(Pesca) y La
BotellaIslote Edén
(Protección)

Islote Edén (sur)(Turismo)

Islote Venecia(Pesca)Isla

Sitiosagrupados

Fernandina

Floreana

Noroeste
Santa Cruz Santa Cruz*

Comentarios
Punta Espinoza es un sitio dealto uso turístico que cuenta
con un buen registro histórico
de datos submareales. Cabo
Douglas, por el contrario, es uno
de los sitios más pristinos de lasislas con un bajo flujo de visitas
y poblaciones extensivas deiguanas marinas.

El área sureste es la más
dinámica, bajo cambios
de corrientes superficiales
estacionales y una compleja
manifestación de la corriente
submarina de Cromwell, lo quele da aún más variabilidad.
Incluye los bloques deproteccion más extensos deSantiago y Floreana. Esta última
cuenta con el mejor registro
histórico de datos submareales
con repeticiones en el tiempo
desde 1994 en la FCD y por los
trabajos de Wellington y Glynn
entre las décadas de 19701980.

Isla Darwin (Imagen: S. Banks)

34 Manual de Monitoreo Submareal

Monitoreo en La Botella - Floreana (Imagen: S. Banks)

Indicadores sobre
el estado biofísico
de la RMG
La información recopilada sobre composiciones de comunidades submareales
tiene diversos usos para la ciencia marina y el manejo de la RMG. Sin embargo,el ritmo para la gestión del manejo normalmente requiere de respuestas urgentes
basadas en datos adecuados para vigilar mejor y reportar a la comunidad sobre
los hábitats y sus bienes. Una retroalimentación regular y enfocada mejora laprobabilidad de enfrentar cualquier problema de una manera proactiva y más
informada.
En vista de que la información levantada es difícil de entender por sí sola, es
necesario diseñar indicadores que hagan uso de estos datos para evaluar cómo
está funcionando el área protegida en forma comparativa en el tiempo. En general,
un buen indicador cumple con cinco criterios: ser medible, preciso, comparable enel tiempo, sensible y sencillo (Margolius y Salafsky 1998).

4"Es sólo mediante la integración
deliberada de seguimiento
y evaluación en el proceso
general de gestión del AMP
que los beneficios de la gestión
adaptativa se pueden realizar”.
"How is my MPA Doing?" WPCA
Marine, NOAA-NOS y WWF
Endangered Seas
2004

Desde el 2004 han existido varios trabajos para aplicar indicadores a la gestiónde la RMG, entre ellos, juegos de indicadores biofísicos, socio-económicos, degobernabilidad y diseño del APM. Estos trabajos fueron basados en los objetivosdel Plan de Manejo de la DPNG y luego, bastante acoplados al trabajo de Pomeroy
et al. 2004 ('How is your MPA Doing'). Aquí mencionamos los indicadores biofísicos
y aspectos de diseño y de representatividad dentro del APM. No obstante, varias
ONG, entre ellas la FCD, han trabajado durante los últimos años para levantar
información relevante sobre los componentes institucionales, sociales, culturales
y económicos. Los ingresos generados por la RMG y la seguridad que brinda a lacomunidad para su futuro dependen de su capital natural.
En conjunto, tales índices nos ayudarán a averiguar cambios en la RMG, pero
también a entender mejor los vínculos entre el estándar del 'buen vivir' de lacomunidad, el estado de su entorno ambiental y los nudos críticos que deberíamos
enfrentar para resolver cualquier conflicto de uso que afectaría el capital natural.
Los indicadores biofísicos candidatos para los datos del monitoreo ecológico estánagrupados por nivel poblacional, por especies claves, comunitarios por hábitat y
por factores abióticos (figura 4-1 A-E).

Edición por Stuart Banks 35

Tabla 4-1: Índices informativos
sobre el diseño espacial del APM(adaptados de Pomeroy et al 2004).

D1 Representación de hábitats en zonas no extractivas.
D2 Proporción de zonas designadas como semilleros en cada región biogeográfica.
D3 Nivel de replicación de zonas no extractivas y de hábitats dentro de cada zona biogeográfica.

D4 Nivel de protección en áreas marinas costeras de alimentación, anidación yforrajeo de especies marinas que permanecen en colonias terrestres (ej. pingüinos,
cormoranes y lobos marinos).

D5 Representación de los servicios ecosistémicos / objetos de conservación dentro dezonas no extractivas.

D6 Nivel de actividad de monitoreo para seguir adecuadamente las medidas de manejo.
Aunque son más difíciles de estimar, hemos incluido también unos índicesecológicos exploratorios más complejos como la integridad trófica (estimado con
modelos más extensivos como 'Ecopath with EcoSim' que incorporan datos por
grupos definidos del monitoreo submareal y de poblaciones de especies (Okeyet al. 2004)) y categorías como la resiliencia, las cuales todavía requieren mayor
investigación o un marco experimental más contundente para su útil aplicación.
Como se ha mencionado anteriormente, el enfoque del levantamiento de datos
ha sido mayoritariamente para arrecife rocoso (que representa >80% de la zonacostera donde interactúan personas) aun si existen datos de línea base acerca delos demás hábitats. Algunos hábitats, como fondos blandos o manglares, tienen
prioridad de atención. Otros, como los pináculos submarinos de la cordillera
ubicados entre los 2000 m a 300 m de profundidad o bentos hidrotermales en elplano abisal, tienen limitadas oportunidades para el estudio con cruceros o equipos
costosos. En la mayoría de estos ejemplos, queda el desafío para gestionar un
programa de monitoreo integrado con un financiamiento estable interanual que
cuente con una infraestructura técnica robusta.
En términos de la información disponible para investigaciones de línea base yactividades de monitoreo hasta el 2014, indicadores B1 y B3 sobre poblaciones ycomunidades tienen información levantada por los grupos submareales durante
el periodo 2004-2014 por toda la RMG. Además, existen datos recopilados en eltiempo para ciertos grupos de especies claves como pingüinos, cormoranes, otras
aves marinas, pinnípedos, cetáceos y tortuga verde, los cuales han contado con
distintos programas individuales de monitoreo en determinados sitios y con varios
equipos de investigación de la FCD, la DPNG y la ciencia ciudadana en barcos deturismo.
Indicadores B4 y B5 se refieren a índices calculados por la integración de la
información comunitaria en modelos, y es un área de investigación activa, no soloen la RMG sino también a escala mundial.
Pez murcielago, Ogcocephalus darwini y estrella de mar Pentaceraster cumingi (Imagen: R. Gallardo)

36 Manual de Monitoreo Submareal

Abundancia deespecies claves

Estructura delas poblaciones
de las especies
clavesB1

B2

Indicadoresbiofísicos
1. Registros por
especies de monitoreo
submareal
Dirigidos a especies
de interés (ej. lobos
marinos, tiburones,etc.).

Especies claves
Algunas especies pueden ser
miembros de varios de losgrupos.
a. Endémicas
Insular Cocos-Malpelo-Glps.
b. Bandera
Emblemática para temas deconservación en las islas.
c. Keystone/ Clave
Cumple un papel
funcional clave dentro delecosistema.
d. Indicadoras de pertubaciones
Sensibles a cambios fuera delrango normal para su hábitat,(ej. ENOS o la sobre-pesca, etc.).
e. Objetivo pesquero
Extraídos por lapesca artesanal para el
consumo.
f. Objetivo turístico
De importancia para laoferta turística de las islas.
g. Exóticas
Transeúntes, potencialmente
problemáticas establecidas enla RMG e invasoras en el'watch list' de la región.
h. Amenazadas
Considerado EN, VU o CR,
según los criterios de la IUCN
Lista Roja.
2. Registros deespecies focales
Dirigidos a especies
de interés (ej. lobos
marinos, tiburones,etc.).

Métodos e
implementación

Grupos potenciales demonitoreo

Espectro de tallas obiomasa / edades,
porcentaje de madurez
sexual.

Estimación ydistribución de labiomasa.

Distribución delas tallas de las
poblaciones.

Individuos / colonias,
Avistamientos deindividuos / colonia,
porcentaje de cobertura,Densidad/ m2

2. Avistamientos deespecies focales incl.
presencia o ausencia.

1. Abundancia relativa

Índices univariados

MedidasEn caso deespecies metapesquera, pre / post
pesquería según las
comisiones técnicas
de la JMP.

Óptimo: Dos
monitoreos por año
en cada estación(caliente y fría). Másútil durante eventos
de El Niño / La Niña.

Mínima: 1 vez por
año en estación
caliente (Feb.-Mayo).

Depende de losrecursos para elmonitoreo y losgrupos objetivosdel programa demonitoreo.

Frecuencia de las
mediciones

Soporte anterior:
DPNG, Darwin
Initiative, Línea
Base, PEW,
Sielmann, BID
Turismo, CI-MMAS
y Zoning Evaluation
USAID.

Base de datos
submarinos de la
FCD
Bases devertebrados marinos(varios) FCD-DPNG.

Datos ubicados en:

Fuente deverificación

Censos pre-postpesquería (langosta,
pepino del mar).

Vertebrados
costeros (avesmarinas, reptiles,
cetáceos, pinnípedos
etc.

Peces pelágicos.

Peces,
macroinvertebrados
móviles,sésiles, algas,
mesogasterópodos,
plancton.

Grupos deorganismos

Tabla 4-2 A: Índices biofísicos para la RMG basados en datos poblacionales obtenidos por censos visuales, marcaje y recaptura.

Edición por Stuart Banks 37

Distribución,
composición yestructura decomunidades

Integridad
trófica

Resiliencia delos hábitats yecosistemas
afectados por
los impactos
climáticos y antropogénicos*

B3

B4

B5

Indicadoresbiofísicos

38 Manual de Monitoreo Submareal
a. Monitoreo submareal
ecológicob. Complots fijos ytransectos de intersección,
video y fotocuadrantes.
c. Muestro de infauna y
substrato
d. Mapeo de hábitat en perfil
vertical (B5)e. Censos pelágicos
f. Muestreo de agua ysedimento
a. Censos pelágicos + video
transecto. Bitácoras depesca
b.Video cámaras y
fotografías remotas con
carnadaSubmareal (<40m):
a. Arrecifes rocososb. Paredes verticalesc. Sistemas coralinos
d. Fondos blandose. Camas de macroalgas
f. Bajos costeros
g. Sistemas hidrotermales
costeros

Aguas abiertas:(ambiente pelágico)a. Epipelágico (0- 200 m)
b. Mesopelágico (200 m 1000 m)c. Bathypelágico (1000 - 3500m+)
a. Cruceros especializados
con equipos de video y
fotografía remotos (ROV)a. Monitoreo intermareal *b. Monitoreo de macrofauna
e infaunac. Monitoreo intermareal ysubmareal por complots
dentro de la zona de manglar
d. Muestreo de redes ycolectores

Hábitats:
Intermareal y humedales:a. Intermareal rocoso(playas - barrancos)
b. Playa arenosac. Manglaresd. Lagunas costeras

Fondo profundo:(Bentónico profundo)
a. Batial plataforma (40 m declive)
b. Bajos y cordilleras
oceánicosc. Batial declive (plataforma3000 m)
d. Plano abisal (>3000 m)
e. Sistemas hidrotermales

Métodos e implementación

Grupos potenciales demonitoreo

B5: Índices de“thresholds”/ límites
de cambio por medios
de modelaje *B4:Modelaje trófico
(EcoPath software)
Fuerza deinteracciones entre
especies,
Análisis de viabilidad
de poblaciones
Eficiencia del flujo deenergía

SpR, distribución,
morfología y salud /enfermedades de loscorales

Estructura dehábitat vertical y por
profundidad

Cambios en
biogeografíaÍndices de diversidad(alfa y beta)
Estimación debiomasaAbundancia degrupos funcionales,
Estructura de tallas
poblacionales.

B3 & B5: Índicesunivariados ymultivariados

MedidasComposición decomunidades
y cobertura dehábitat. Combina
informaciónde B7 sobre
reclutamiento

B5:
Comparación
antes-después o(Before- Aftercomparisonof Impacts o
BACI) luego depertubaciones
fuertes (derrame,
El Niño, etc.) yentre subzonas
extractivas ysantuarios.

B4:
Modelos basados
en datos
estacionales yhasta bi-anuales
con EcoSim
software.

B3:
De 2 a 4
veces por año(dependiendo delsitio, del desarrollode eventos
oceanográficos
y climáticosanómalos, asícomo de fondos
disponibles).

Frecuencia de las
mediciones

Peces, cefalópodos,
plancton, cetáceos,
tortugas marinas.

Peces,
macroinvertebrados
móviles, sésiles, algas,
mesogasterópodos,
plancton.

Peces,
macroinvertebrados
móviles, infauna,manglar, sésiles, algas,
megafauna.

Grupos de organismos

B5:* Requiere mayor
Invertebrados yinvestigación;
vertebrados deÍndices de modelaje sistemas profundos.
de capacidaddel sistema para
resistir cambios
estructurales ysu capacidad derecuperación.

B4:
4 modelos de
EcoPath hasta el
2014:
a. Arrecife rocoso
generalizado(Floreana) (Okey etal. 2004); b. Zonade afloramiento(Canal Simón
Bolívar) (Ruiz 2011);
c. Aguas abiertas(Peñaherrera yWolff 2010); d.
Sistemas coralinasde Wolf y Darwin(Ruiz, Banks &Wolff 2015).

B3:
Datos 1994-2014:
Proyectos FCD:
Darwin Initiative,
Línea Base, PEW,
Sielmann, BID
Turismo y Zoning
Evaluation USAID.

Fuente deverificación

Tabla 4-2 B: Indices biofísicos para la RMG basados en datos de comunidades por hábitat obtenidos por medio de censos visuales y modelaje.

B6

Calidad de agua

IndicadoresbiofísicosBahías y fondeaderosi. Contaminación química
j. Acumulación dehidrocarburos
k. Coliformes
l. Desechos sólidosÍndices biofísicos:
TSM, [Chl-a], k-490(orgánicos), Salinidad,[O2], altura de oleaje,
SSH (sea surface
height), nutrientes([NO3], [NO2], [PO4]).
Índice local de estréstérmico.
Índice local de estrés
productivo.

Medidasl. Conteo de basura durante
limpieza costeraÍndices decontaminación:
Concentraciones
de coliformes,
metales pesados e
hidrocarburos

Índicesclimatológicos:
Anomalías TSM y deprofundidad.
Degree Heating/Instrumentos in situ:
Cooling Weeks (DHW).
(automatizados)
Profundidad de
Típicamente solo TSM
isoterma a 20 deg.C.
También posible Chl-a, O2,
NOAA ONI regional
salinidad con mantenimiento. Glps Índice de ENOS.

Cruceros oceanográficos(traks y perfiles verticales
CTD)
Requiere laboratorio paraquímicos:
a-e + h-l

Extracción de datos
satelitales:a. NOAA/ MODIS-Aqua TSM
b. SeaWiFS/ MODIS Chl-ac. Hyperiond. SeaWiFS/ MODIS k490
e. TOPEX
f. NASA SeaWinds y TOPEX
g. TOPEX altura del mar

Parámetros oceanográficos

Aguas costeras y abiertas:a. Temperatura superficial(TSM) / submarealb. Productividad primariac. Salinidadd. Orgánicos disueltos
e. Oxigenación
f. Oleaje / exposición costerag. Altura de la superficie delmarh. Nutrientes

Métodos e implementación

Grupos potenciales demonitoreo

Cruceros
oceanográficos:
Realizados cadaaño o estación(por INOCAR).

Datos deinstrumentos
in situ instalados
por la zona costera
a 10 m y 20 m
de profundidad;
recuperados cada
6 meses por año.
Programablepero datos
con intervalosde 30 minutos
normalmente es
suficiente.

Datos satelitales:
Diarios resumidos
al nivel semanal ymensual.

Frecuencia de las
mediciones

JICA- DPNG
Proyecto Calidad de agua
Bahía Academia.

Datos de loggers HOBO:
En Wolf fondeadero, Punta
Espinoza, Fernandina,Bahía Academia, Santa
Cruz, FCD-Marino.

Cruceros internacionales
colaborativos (NSF/ NOAA/
EU etc.)MN Sierra Negra Proyecto
NASA-Ocean FCD/ DPNG
2004-2007.

Datos de cruceros:
Oceanográficos
INOCAR.

Datos satelitales:
NOAA/ NASA/ ESA, uso
libre, 1986-presente.

Fuente de verificación
Parámetros
abióticos.

Grupos deorganismos

Tabla 4-2 C: Índices oceanográficos y de clima para la RMG basados en datos remotos satelitales, sensores submarinos y cruceros oceanográficos.

Edición por Stuart Banks 39

40 Manual de Monitoreo Submareal

B7

Nivel dereclutamiento

Indicadoresbiofísicosa. Prevalencia de corrientes delas provincias biogeografícasdel Pacifico
Panamá, Perú / Chile, IndoPacífico.

Conectividad:

Especies claves:
Especies formadores de hábitat,bioingenieras, extraídas oendémicas con poblaciones
pequeñas.
a. “Keystone”/ Pieza Clave
Cumple un papel
funcional clave dentro delecosistema.
b. Objetivo pesquero
Extraídos por lapesca artesanal para consumo
c. Amenazadas
Consideradas EN, VU o CR
según los criterios de la IUCN
Lista Roja.

Grupos potenciales demonitoreo

6. Modelaje decorrientes con
seguimiento departículas

5. Cuadrantes encomplots fijos paracorales y algas
Nuevas colonias decorales y macroalgas

4. Búsquedas dirigidas
a juveniles crípticos
como pepino de mar

3. Rastreos dezooplancton
Proporción demeroplancton por grupo+ larvas de especiesmeta.

2. Placas de sustrato
para asentamientode larvas sésiles
Juveniles de langosta,
balanos, corales, algas,
etc.

1. Tallas de juveniles
Censo demacroinvertebrados
móviles y peces en elmonitoreo ecológico
submareal.
Trampas / colectoressubmarinos.

Métodos e
implementación
Intervalos de 1 a 3
meses.

Frecuencia de las
mediciones

Tropical y desde el IndoPacífico (utiliza el tiempode viabilidad larval por
cada grupo taxonómico
de interés).

2 & 5. Cobertura de

Muestreos cada
1-3 meses durante
eventos fuertes de
La Niña o El Niño
podrían ser bastante
informativos para el
manejo en futuros
eventos.

Resultados deestudios deespecies reclutadas en
linea base para
placas o cuadrante /caracterizar
tiempo.
la selectividad
de trampas de
3. Densidad de faselarvas, la señal delarvaria de especies deinterés / localidad.
estacionalidad en el
asentamiento y la
6. Índice de acercamiento provisión de larvasde partículas sembradas son necesarios paraen las demás APMs de la aclarar posibles
región del Pacífico Este
indicadores.

relativa en tipo de talla
para juveniles.

1 & 4. Abundancia

MedidasModelo HyCoM decirculación oceánica
por FCD-NCSU +modelo ROMS de
INOCAR.

Datos filtrados demonitoreo ecológico
submareal parajuveniles.

Manipulación
experimental con
placas por Dr. Jon
Witman 1997-2014+

Variasinvestigaciones
anteriores paradiseñar colectoresde juveniles (J.
Moreno, F.Rivera,
A.Hearn).

Fuente deverificación

Vectores decorrientes
superficiales yprofundas.

Especies meta de laspesquerías(ej. langosta, pesca
blanca, pepino)

Formadores dehábitat(corales,macroalgas).

Grupos deorganismos

Tabla 4-2 D: Índices biofísicos para la RMG basados en estimaciones de reclutamiento por censos poblacionales y uso de colectores de larvas y juveniles.

B8

Pesquerías artesanales:

Grupos potenciales demonitoreo

Bacalao, camotillo, brujo,
pargo, lisa, ojones, etc.
f. Pesca blanca oceánica (dealtura)Atún, wahoo, jurel, dorado,etc.

1. Invertebrados marinosa. Pepino de mar
Isostichopus fuscus
b. Langosta sp.
3 Panulirus sp. +Scyllarides astoric. Moluscos submareales
Hexaplex , Pleuroploca,
pulpo, etc.
d. Recursos intermareales
Tipo, nivel y
Canchalagua, pulpo,éxito de captura
churo, etc.
(CPUE) delos recursos
2. Peces.
pesqueros
e. Pesca blanca costera

Indicadoresbiofísicos

4. Estudios plan piloto paraartes de pesca alternativas.

3. Registro de guías enviado
para exportación.

CPUE

2. Bitácora de registro
de desembarques en losmuelles.
Proporción yestructura de pesca
incidental y pesca
asociada a cadapesquería.

Volúmenes y tamaño
de captura de losrecursos pesqueros.

Medidas

1. Registros de observadoresa bordo de embarcaciones
pesqueras.

Métodos e implementación
Según la dinámica
de las temporadasde pesca.

Frecuencia de las
mediciones
Especies
meta de laspesquerías

Grupos deorganismos

Informes DPNG-FCD pre y Peces
post pesquerías e informes oceánicos:
de pesca de altura.
Scombrids
Caranjids
Bases de proyecto FCD-EU
INCOFISH.
Peces
costeros:Reconstrucción deLutjanids
informacion pesquera por
Labriformes
programa PARFISH.
Serrandids
Mugidids, etc.
Base de datos pesquerosdel DPNG-FCD.
Invertebrados:
Panulirus Sp.
Scyllarides
astori,Isosticopus
fuscus,
Octopus sp.,
Hexaplexprinceps,
Pleuroploca
princeps, etc.

FCD-Línea Base de la RMG.

Datos pesqueros:

Fuente de verificación

Tabla 4-2 E: Índices biofísicos para la RMG basados en datos sobre las pesquerías artesanales de Galápagos.

Edición por Stuart Banks 41

5"El buceo es, en gran medida,
un mundo en blanco y negro,en términos de las leyes y las
reglas que hay que cumplir. Todo
se reduce a la física clara. Si serompen las leyes, penas severas
se presentan, incluyendo
parálisis o incluso la muerte”.
Carlos Eyles,
The Blue Edge

Cada buzo es responsable
por su propio equipo... y desorden.
(Imagen: S.Banks)

42 Manual de Monitoreo Submareal(Imagen: J. C. Moncayo)

Seguridad y preRrequisitos
para el buceo
La seguridad en el buceo es un requisito absolutamente obligatorio para lostrabajos técnicos realizados debajo del agua con el uso de aire comprimido(Scuba). Por ende hemos discutido, evaluado y elaborado un 'Manual de Seguridad
de Buceo' (Pépolas y Keith 2013) con mucho detalle, el cual está disponible en la
FCD. Las actividades del buceo científico y programación de cursos auxiliares (ej.
primeros auxilios o provisión de oxigeno) deberán ser revisados con anticipación
cada semestre por un Comité de Control de Buceo (CCB).
El trabajo de campo requiere de organización y planificación para poder llevar a cabo
y cumplir con éxito los objetivos de cada viaje. Generalmente, existe un encargado
de organizar el viaje en general y otro encargado de organizar la operación debuceo. Ambos coordinadores deben trabajar en conjunto para asegurarse de queno se omita nada durante el viaje. Para él éxito de una salida de campo se debeorganizar cada etapa tomando en cuenta los siguientes pasos:• Llevar a cabo reuniones de planificación con el equipo de monitoreo para
informar sobre los objetivos y la organización del viaje.
• Tener a la mano una lista del material necesario antes de cada salida.
• Visitar el barco que se utilizará en la salida para verificar si existe espacio suficiente para almacenar los tanques, usar el compresor y operar desde la cubierta
con facilidad y seguridad durante los buceos.
• Coordinar con el jefe de logística la hora de embarque y de zarpe de laembarcación.
• Organizar el embalaje y embarque del equipo de campo, teniendo en cuenta quela mayoría del material debe estar almacenado dentro de fundas y contenedores
plásticos impermeables, sobre todo los libros, radios, GPS y cámaras fotográficas
y de video para que no se dañen durante el trasporte.
• Cumplir con el proceso de cuarentena para los equipos con dos días deanticipación antes de la salida al campo.
• Llenar la hoja de solicitud del PNG para obtener el respectivo permiso de salidade campo y cumplir con los requisitos de operaciones de campo establecidos
en el Manual de Procedimientos de Campo del PNG.

Durante el viaje se debe asegurar lo siguiente:• El líder del viaje debe tener todos los papeles y su identificación para presentara los oficiales de la DPNG, ABG o Armada si fuera necesario.
• Asignar cabinas de manera coordinada, de acuerdo con las necesidades deacceso de los integrantes del grupo.
• Realizar el briefing de seguridad antes de iniciar el primer buceo.
• Todos deben saber dónde está el tanque de oxígeno y sus accesorios, el kit deprimeros auxilios, los radios y el teléfono satelital.
• Durante el viaje el líder del grupo debe mantener una buena comunicación entre
el Oficial de Seguridad (si está presente) y el Capitán del barco.
• Confirmar el horario estimado de los buceos para asegurar que se llegue a lossitios en buena hora y el horario de las comidas. Normalmente, el Capitán es
el responsable de la operación de su nave y debe estar bien informado para
asegurar que los pangueros estén pendientes cuando salgan los grupos debuzos. Es muy útil dejar un cronograma con el Capitán con puntos de GPS, etc.,
en caso de que se necesite.
• Cualquier arreglo referente al viaje debe ser discutido directamente con elCapitán.

(Imagen: G.Feldman - NASA)

Cualquier persona que quiera participar como buzo en nuestro programa deberá
cumplir con los siguientes requisitos:
1. Haber leído el 'Manual de Seguridad de Buceo' (Keith y Pépolas 2013) en su
totalidad y cumplir con todos los requerimientos allí manifestados.
2. Ser un buzo certificado (nivel equivalente a Rescate).
3. Tener un mínimo de 50 inmersiones registradas.
4. Contar con un seguro de buceo (DAN o similar) y asegurarse que su seguro
esté vigente.
5. Completar y firmar los documentos 'Descargo de responsabilidades y asunción
expresa de riesgo' e 'Información personal'.
6. Estar capacitado en primeros auxilios y como proveedor de oxígeno DAN.
Como se mencionó anteriormente, el trabajo de campo generalmente involucra
dos grupos de tres buzos cada uno, acompañados por el respectivo operador dela panga o bote inflable. A los sitios de buceo se accede desde el bote principal por
medio de un bote inflable o de una panga de madera. Generalmente, en cada sitio
opera un grupo de tres buzos encabezado por un líder de grupo. El buceo es una
actividad que exige mucha responsabilidad y seguridad. Es necesario observar y
cumplir las normas establecidas para minimizar los riesgos y evitar accidentes.
Asimismo, el buceo es una actividad de grupo, por lo que siempre se debe estar
pendiente del compañero y estar listo y preparado para asistirlo en caso de que
sea necesario. Se debe ser prudente y conservado en las decisiones que se toman.

(Imagen: G.Feldman - NASA)!

Además, hay que ser cuidadoso con el equipo, asegurarse de que esté en buenas
condiciones antes de cada viaje y darle el mantenimiento necesario para prolongar
su durabilidad. Asimismo, se debe ser ordenado antes y después de cada inmersión,
y colocar los equipos en los respectivos chayos o fundas de buceo. Cada buzo es
responsable por su equipo y debe tratarlo como si fuese suyo. A continuación, sepresenta una serie de requisitos y normas para garantizar una operación segura
y ordenada. Queda entendido de antemano que cualquier pérdida del equipo por
descuido (no accidental) por parte del buzo quedará bajo su responsabilidad
personal y deberá de reponerlo.
Siempre buscaremos oportunidades para que estudiantes y voluntarios, dentro delo posible, aprendan y ganen experiencia en el agua. Esto queda bajo el estricto
permiso del Oficial de Seguridad y del líder del viaje. Para ello, debe contar con lasupervisión directa de los buzos calificados al nivel de instructor y la inmersión sellevará a cabo en sitios con condiciones adecuadas (mar calmado).

Preparándose para el buceo
y llenando los tanques.
(Imagenes: G.Feldman - NASA)

Edición por Stuart Banks 43

Normas a seguir durante la operación de buceo
Generalmente, nuestro trabajo involucra a dos equipos. Dentro de cada grupo habrá
un responsable de la seguridad que se encargará de vigilar y coordinar las actividades
bajo el agua. Esta persona debe verificar que exista una radio, un GPS y agua durantecada una de las inmersiones. Además, se responsabilizará de que todos los buzos
cuenten con los implementos necesarios antes de cada inmersión y decidirá si lascondiciones son adecuadas para la operación de buceo. También realizará un briefing
sobre las condiciones del buceo, indicaciones sobre el sitio submarino de trabajo y una
estimación del tiempo límite para la inmersión a cada profundidad. Estará pendiente dela profundidad bajo la panga y de la distancia entre las dos profundidades para evitar
demasiada natación al colocar los transectos. Todos los buzos deben ser conscientes
de su orientación y rumbo mediante el uso de una brújula (tomando como referencia
la costa). El líder del grupo dará indicaciones al panguero sobre la zona de trabajo
y el tiempo estimado total para la inmersión. Finalmente, hará el conteo previo a la
inmersión para asegurar el ingreso coordinado y simultaneo de los buzos al agua.
Es aconsejable que todos los integrantes del grupo asciendan y desciendan
simultáneamente. Es importante mantener un contacto visual permanente con loscompañeros de inmersión y avisar al coordinador o al compañero más cercano
sobre cualquier novedad en el funcionamiento del equipo, el estado de salud o laconclusión del buceo. Nunca se debe dejar a un compañero solo bajo el agua. Esta
coordinación es aún más importante en condiciones de visibilidad restringida y/oalta corriente u oleaje.
Es aconsejable y necesario emerger con por lo menos 500 PSI para poder enfrentar
cualquier eventualidad durante el ascenso o acercamiento al bote (corrientes
ascendentes o descendientes, corrientes en general, oleaje fuerte en la superficie).
Los buzos siempre deben estar pendientes de su tiempo de fondo (bottom time),y acoplarse al perfil de buceo del integrante con menos tiempo. Típicamente, esta
sería la persona que monitorea especies sésiles debido a que permanecen, en su
mayoría, cerca del fondo durante su trabajo. En cuanto al uso del aire, es importanterecordar que forman un grupo y que deben acoplarse al ritmo del consumo de airede todos sus integrantes.
Es recomendable realizar un máximo de tres buceos al día, realizando la primera
inmersión en las primeras horas de la mañana; la siguiente, dos horas después; yla tercera, en horas de la tarde, entre las 14:00 y las 16:00, para evitar regresar en laoscuridad. Durante un viaje, es buena práctica dejar algunos días con menos carga
obligatoria de buceo para minimizar la acumulación de nitrógeno.
Al finalizar el viaje, cada integrante deberá dar el mantenimiento apropiado tantoa sus equipos de buceo como de trabajo, reportar cualquier desperfecto en losmismos y volver a almacenar su equipo en el lugar que corresponda.
(Imagen: CC-FCD)

Es importante asegurar que los buzos
cuentan con el apoyo de seguridad debuceo adecuado para los sitios en donde
trabajaran. (Arriba a bajo; señal de Dive
Alert, Radio VHF a prueba de agua con
posicionamiento GPS en la superficie;
silvato de buceo; luz de emergencia).

Punta Espinoza a 15 m, Fernandina. (Imagen: S.Banks)

La organización delbuceo científico
en el campo
Los censos submareales pretenden tomar una imagen instantánea bastante
representativa del ensamblaje de especies visibles en cada sitio de muestreo.
Se incluye una serie de megafauna y de especies de macroalgas, incluyendoproductores primarios, herbívoros, depredadores, omnívoros y detritívoros, desde
tiburones ballena, hasta gusanos planos y anémonas. En su mayoría, se colectan
datos de abundancia, cobertura, estructura de tallas, composición y diversidad deespecies.

6"Desde el nacimiento, el hombre
lleva el peso de la gravedad sobre
sus hombros. Él está atornillado a latierra. Pero el hombre no tiene más
que hundirse bajo la superficie y ya
es libre".
Jacques Yves Cousteau

Los monitoreos se concentran en tres grandes grupos:• Peces (ej. tiburones ballena, bacalao, peces bandera, pargos, damiselas, etc.) en
2 pasillos de 50 m x 5 m2.
• Organismos sésiles (ej. corales, algas, hidroides, briozoos, gorgonias, anémonas,
balanos, etc.) por 10 cuadrantes de 0.25 m2.
• Macroinvertebrados móviles (ej. estrellas de mar, erizos, pepinos, moluscos,etc.) en 20 tramos de 5 m x 1 m.
También, si es factible, se incluyen mesogastrópodos (churos pequeños que dejan
ver impactos indirectos) como parte de la muestra de especies sésiles.
Es importante recordar que este es un censo visual que no cuenta con las
especies crípticas escondidas bajo el arrecife, sino solo con los individuos que
un buzo puede ver sin mover las rocas. Las especies crípticas requieren otro tipo
de monitoreo aunque están registradas durante las búsquedas dirigidas (que síinvolucran observar bajo las rocas) o cuando se realizan inmersiones nocturnas.

Embarcando equipos de campo.
(Imagen: S.Banks)

Las técnicas empleadas para monitorear cada grupo son distintas y se realizan
por personas diferentes (ver secciones 7-10). Generalmente se conforman grupos
de tres o cuatro personas y cada persona se especializa en uno de estos gruposde monitoreo y realiza el trabajo de manera consistente para mejorar y mantenerla precisión en la toma de datos. En general, nuevos integrantes sin experiencia
previa comienzan con macroinvertebrados móviles, siendo el grupo más confiablepara empezar y, luego de acostumbrase al ritmo del trabajo, aprenden por lo menos
Edición por Stuart Banks 45

un grupo de monitoreo diferente. De esta forma es posible contar con reemplazos
durante un viaje, en caso de que ocurra cualquier imprevisto y a través de los años,
con el intercambio de personas.
Existen varios materiales para entrenar a los buzos disponibles en la FCD, pero la
mejor ayuda es la práctica directamente en el campo. En caso de tener nuevos
integrantes en el grupo es aconsejable programar por lo menos un día de prácticas
en un sitio diverso del campo (como Floreana) e incluir comparaciones entre buzosen el mismo sitio antes de tomar datos de verdad.
Por lo general, los trabajos con peces y grupos sésiles requieren de un mejor consumo
de aire y una mayor experiencia en el buceo. Los censos de peces requieren rigor enla estimación de abundancia y tallas, mientras los sésiles requieren un mayor nivel
de experticia taxonómica para la identificación de especies in situ en sus cuadrantes.

Colocación de transectos
Un análisis del poder del muestreo durante la fase de diseño del monitoreo indicó
que capturamos un componente de la diversidad representativa por cada grupo
dentro de tramos de 60 m de largo. Por razones logísticas nos quedamos con
un transecto de 50 m (largo de cinta de la fábrica) como la unidad mínima demuestreo para la mayoría de los monitoreos. En algunos estudios extendemos
los transectos a 100 m de largo para mejorar la detección de ciertas especies deinterés comercial pero de baja abundancia como el bacalao Mycteroperca olfax, el
pepino del mar Isostichopus fuscus o la langosta Panulirus Sp.
Durante la charla previa a la inmersión (ver sección 5: operación de buceo), se
deberá informar al grupo sobre las condiciones del sitio, la longitud del transecto
a medir y las personas que estarán encargadas de colocar y retirar las cintas bajo
el agua.
Por lo general, el encargado de realizar los monitoreos de macroinvertebrados
móviles también se encargará de colocar las cintas; sin embargo, si las condiciones
no son las óptimas (ej. fuerte oleaje y corriente) se aconseja asignar esta tarea al
buzo con más experiencia o con menor consumo de aire promedio bajo el agua.
Asimismo, si el transecto es de 100 m de longitud, la recolección de la cinta en
el transecto más profundo deberá ser realizada por el encargado de monitorear
sésiles, mientras que la cinta menos profunda deberá ser recogida por la persona
encargada de los macroinvertebrados.

Arrecife de Marchena.
(Imagen: Graham Edgar)

Para la mayoría de sitios se debe colocar el transecto, primero a 15 m (45 pies) de
profundidad y, luego de retirar el mismo, todos los buzos suben juntos a la segunda
profundidad más somera para colocar el transecto a 6 m (18 pies) de profundidad.
En todos los casos es importante tener un plan claro y discutido anteriormente entre
los integrantes para aclarar quien moverá el transecto. La buena comunicación
bajo el agua es clave si llega a ser necesario cambiar los planes durante el buceo.
Siempre se debe estar pendiente de lo que ocurre alrededor.
Antes de colocar el transecto se deberá observar el perfil de declive para elegir
la mejor trayectoria posible. Características pequeñas que interrumpan lacontinuidad del trayecto como despeñaderos, fondos de arena u otros elementos
topográficos atípicos de los fondos duros, deberán ser atravesadas si su longitud
vertical no se extiende más allá de los 2 m, de lo contrario, deberán ser rodeados.
Idealmente la cinta debe ser colocada a lo largo del fondo marino y sujeta al
substrato desde el principio y en tramos subsiguientes por medio de salientes,
rocas u otros promontorios que sirvan para fijar la cinta al fondo marino. Dicha
práctica es importante en áreas de oleaje, donde abundan lobos marinos y donde seexperimenten corrientes medianas a fuertes. Algunos sitios tendrán indicaciones

46 Manual de Monitoreo Submareal

sobre el punto de dónde iniciar el transecto y están marcados con varillas y/uotras veces con boyas pequeñas (aunque no duran muchos años). Estos detalles
están en la tabla de 'Sites' en la base de datos submarina; sin embargo, los líderes
de cada grupo deben conocer bien el perfil de cada sitio. En algunos sitios con
mucha arena no es posible encontrar 15 m de profundidad y es necesario colocar
el transecto en la franja del arrecife rocoso a 10 - 14m. En estos sitios, la pangadebe ubicarse bien para bajar de 12 a 13 m y evitar caer sobre un banco extenso
de arena.

Idealmente, la cinta debe ser colocada a lo largo del fondo marino y sujeta al substrato desdeel principio y en tramos subsiguientes por medio de salientes, rocas u otros promontorios
que sirvan para fijar la cinta al fondo marino.
Las condiciones en cualquier sitio pueden variar rápidamente, incluso durante un
buceo en algunos de los lugares más expuestos. Si se siente oleaje a 15 m deprofundidad es bastante probable que el transecto a 6 m será movido. En tales
casos el transecto puede ser colocado a 7-8 m (20-25 pies) de profundidad.
Recuerde que la cinta del transecto es solo una referencia visual de longitud para
tener unidades de muestreo estándar y no ayuda mucho si no se pueden sacarbuenos datos. De ser necesario, cada buzo deberá considerar las condiciones decorriente u oleaje y adaptarse a ellas. Los buzos trabajando con cuadrantes paralas especies sésiles pueden subir un poco más arriba de la cinta del transecto ocolocar su cuadrante más cerca de los 6 m según su experiencia y comodidad enel agua. Si es muy difícil trabajar y sacar buenos datos se puede bajar y trabajar a
7 - 8 m. A veces, una diferencia de 1 m reduce la resaca considerablemente. En elcaso de que las condiciones sean demasiado exigentes para el grupo, el líder delgrupo indicará si deben salir juntos y subir tranquilamente o simplemente hacer unregistro de presencia de especies para cada grupo de monitoreo.
Sobre todo, se debe respetar la seguridad de buceo y salir del agua con>500 PSI de aire. Siempre existe la posibilidad de cambiar tanques si fuese
necesario, o pedir a un compañero que todavía tenga aire que ayude a retirarel transecto. El perfil de buceo para el monitoreo está programado de tal modoque el riesgo de enfermedad de descompresión se minimice durante y entre losdías de inmersiones repetidas. En general, no se debe pasar más de 30 minutos
trabajando en el transecto a 15 m y se debe terminar de trabajar, por lo menos,de 20 a 30 minutos en una profundidad de 6 m, beneficiando la seguridad en
cuanto a la absorción y eliminación de nitrógeno.
Cualquier observador (e incluso los integrantes del monitoreo) deben respetar a lagente que aún se encuentre tomando datos. En caso de que algún participante esté
aprendiendo técnicas de monitoreo o buceo, es buena práctica tener dos personas
trabajando juntas en el censo de macroinvertebrados y/o colocando el transecto.
Si el sitio es muy movido o de difícil acceso para trabajar (como una pared vertical
expuesta) ayuda el tener un cuarto buzo por grupo que contribuya a colocar bien
el transecto para que los demás puedan concentrarse en su recolección de datos.
En cada transecto, cada buzo debe registrar las condiciones del buceo en su hoja
de datos indicando con claridad el sitio, su nombre, la fecha, la hora, la temperatura,el oleaje y la corriente. Posteriormente, esta información se ingresará en la basede datos entre las hojas de 'Dive' y 'Transect'. Como buena práctica, cada buzo
deberá mantener un contacto visual con sus compañeros y, en lo posible, estar
listo para poder asistir a los miembros de su equipo en caso de que sea necesario.
Finalmente, debe asegurarse que la hoja de datos esté siempre bien colocada yfirmemente asegurada para evitar la pérdida del arduo trabajo que se hizo bajo elmar, sobre todo durante la salida del agua a la panga.
Arrecife de Marchena.
(Imagen: A Graham Edgar)

Edición por Stuart Banks 47

Un transecto típico esta descrito en la figura 6-1. El buzo de macroinvertebrados(verde) ha ubicado el transecto a una profundidad uniforme y regresa desde los 50
m hasta el inicio del transecto por el lado costero. El buzo que está contando peces(azul) inicia su primer tramo de 5 m x 5 m desde el lado de agua abierta hacia ellado opuesto del transecto, lo cual minimiza la interferencia con el censo visual. A
su regreso, ambos buzos intercambian los lados. El buzo de peces debe dejar un
espacio de 2 m entre los 2 tramos de 50 m x 5 m para evitar la psuedoreplicaciónde datos. El buzo que trabaja con organismos sésiles coloca su cuadrante cada 5m desde el inicio y termina cuando llega a los 50 m. Normalmente, ambos buzos
se cruzan entre ellos dos veces durante la ida y la vuelta y terminan juntos paradirigirse a la próxima profundidad o a la superficie.

Figura 6-1: Un transecto submareal típico para el censo visual de 50 m de largo.

(Imagen: S. Banks)

48 Manual de Monitoreo Submareal

Posible Corallimorphus sp. 12 m, Punta de Seymour. (Imagen: Rafael Rallardo)

Macroinvertebrados
sésiles y algas
Los organismos bentónicos sésiles son un componente importante y conspicuo
dentro de las comunidades marinas. Por su forma de vida sedentaria, estos
organismos son buenos indicadores de las condiciones locales imperantes, delos cambios físicos y biológicos, y de aquellos efectos producidos por fenómenos
naturales o por perturbaciones de origen humano. Los organismos bentónicossésiles incluyen algas, esponjas, anémonas, hidroides, corales blandos, corales
duros, cirripedios, briozoos, entre otros.

7
Figura 7-1: Un cuadrante de PVC con 81
puntos de intersección cada 5 cm en unárea de 0.25m2.

Para los organismos bentónicos, el espacio es un recurso absoluto por el cualtienen que competir y adoptar estrategias para sobrevivir y evitar ser depredados.
Su presencia o ausencia constituye un buen indicador de los procesos biológicos
y abióticos imperantes, ya sean resultado de la competencia, de las interacciones
con sus predadores o con sus presas, o de efectos a gran escala como patrones decirculación de corrientes, eventos de reclutamiento, temperatura, etc.
Para conocer la riqueza de especies y la abundancia de organismos sésiles, sedetermina el grado de uso del sustrato por medio del porcentaje de cobertura. Este
método no es invasivo y es fácil de aplicar: se determina, de forma directa, pormedio del buceo Scuba y del uso de cuadrantes y de áreas muestrales, o en forma
indirecta, por medio de cámaras de vídeo o fotográficas.
Los cuadrantes son construidos de PVC, tienen una dimensión de 0.25 m2 (50cm por lado cuadrado) y están divididos por una rejilla que cuenta con 81 puntos
de intersección (figura 7-1). Estos cuadrantes se colocan de forma sistemática, aintervalos de 5 m, a lo largo de un transecto fijo sobre el fondo marino (figura 7-2).
El número de cuadrantes fue establecido con base en un balance entre el tiempode inmersión y la curva de saturación de especies. Típicamente, hay 10 cuadrantes
en un transecto de 50 m de longitud.

La gorgonia Leptogorgia alba a 20 m deprofundidad en el Arco de Darwin, Isla
Darwin. (Imagen: A. Chiriboga)

Edición por Stuart Banks 49

Figura 7-2: Posición del cuadrante alo largo de la cinta.

Cama de alga café, Dictyota sp.

(Imagen: G. Edgar)

Anemona, Bunodosoma grandis(Imagen: G. Edgar)

Tunicado, Didemnum sp. (Imagen: G. Edgar)

Para la toma de muestras de estos organismos se eligió una metodología basada en
puntos de intercepción por varias razones. Al inicio del monitoreo, la base taxonómica
de las especies sésiles era menos conocida comparada con los grupos de peces ymacroinvertebrados móviles. Para mejorar el inventario de especies, reconocer yvalorar el rol de la biodiversidad, evaluar la llegada de especies invasoras y averiguar
posibles extinciones o disminución de poblaciones, primero era necesario saber
qué existe. El método de intercepciones sirve para que el buzo investigador ponga
su atención de forma sistemática en los organismos particulares bajo cada cruzdel hilo para su debida identificación. Por el contrario, métodos que solo utilizan elporcentaje de cobertura por cuadrillas no tienen la misma resolución taxonómica yson más eficientes sobre substrato marino más homogéneo, como corales pétreos.
En comparación con sitios en otras partes del Pacifico Este Tropical que reciben
más atención de muestreo sobre arrecife coralino, la cobertura de sésiles sobre
el arrecife rocoso es particularmente diversa en las islas, en especial, en sitiosde corrientes fuertes como paredes verticales. Durante los años 1994 a 2014 seha trabajado constantemente para mejorar la taxonomía de grupos sésiles y aún
es necesario continuar asesorándose con la ayuda de expertos (ver tabla 2-1
en sección 2). Aunque este monitoreo requiera de un alto nivel de identificación
taxonómico, gran parte del análisis está enfocado en grupos funcionales (ej.
alga café no identificada, esponja amarilla, etc.) lo cual asegura una cierta retrocompatibilidad de los datos de años anteriores en su análisis.

Durante los años 1994 a 2014 se ha trabajado constantemente para mejorar la taxonomía degrupos sésiles y aún es necesario continuar asesorándose con la ayuda de expertos.
En cada cuadrante se deben anotar a todas las especies observadas. En el extremo
izquierdo de la hoja se escribe el nombre del organismo, a menudo abreviado por
seis letras: tres que corresponden al género y tres a la especie (figura 7-3). Estos
códigos corresponden a la lista de especies dentro la base de datos submarina dela FCD.
Si una especie no es identificada se recomienda hacer un bosquejo del organismo,
acompañado de una descripción morfológica e historia de vida. Se deben
considerar los siguientes elementos:
1. Forma de crecimiento (incrustante, ramificada, erecta).
2. Color.
3. Textura.
4. Substrato sobre el cual crece.
Coral negro, Antipathes galapagensis(Imagen: G. Edgar)

50 Manual de Monitoreo Submareal

5. Datos físicos (profundidad, temperatura, fuerza del oleaje, presencia decorrientes).

Figura 7-3: Ejemplo de una hoja dedatos de campo para las especiessésiles invertebradas y algas. La
hoja está dividida en 10 columnas
que representan cada cuadrante
con cada caja por especie, dividida(con /) para distinguir entre losdos transectos a 15 m y 6 m deprofundidad.

Esponja amarilla, Aplisina sp.
(Imagen: G. Edgar)

Anemona, Antiparactis cf. lineolatus(Imagen: J. C. Moncayo)

Alga café Padina sp.
(Imagen: G. Edgar)

Aquellos organismos que no pudieron ser identificados bajo el agua deberán ser
colectados para su posterior identificación y, si es pertinente, para calcular su
biomasa. Si es posible, cada grupo de monitoreo debe tener por lo menos una
cámara para tomar fotos in situ para complementar cualquier colección. Los
individuos coleccionados deben ser etiquetados según los lineamientos para lascolecciones marinas (ver sección 17).
Para determinar la abundancia de una especie se evalúa el número de intersecciones
que cubre cada tipo de organismo presente en el cuadrante (figura 7-4). Si algúnorganismo está presente pero no coincide con los puntos de intersección, se leasigna una nota para documentar su presencia dentro del cuadrante. Esto dependede si se cuenta con el tiempo suficiente (considerando que las repeticiones deben
ser suficientes para que representen la biodiversidad). Los organismos sonclasificados como especies o dentro de grupos funcionales de acuerdo con el nivel
de conocimiento taxonómico (ej. algas foliosas, algas filamentosas, algas rojas,
algas verdes, algas incrustantes, corales blandos, corales duros, etc.).

Alga roja, Gelidium sp.
(Imagen: G. Edgar)

Hidroide, Nemalecium lighti(Imagen: G. Edgar)

Edición por Stuart Banks 51

Figura 7-4: Cuadrante de PVC con
sus respectivas estimaciones deabundancia por especie.

Sp3
Asignaruna nota

Sp2
8 puntos

Sp4
8 puntos
Sp1
5 puntos

Pueden existir dos niveles de cuantificación:
1. Substrato primario: corresponde a la primera capa de organismos que seasienta sobre el fondo marino. Se lo conoce como epibentos y es el substrato
que ha sido cuantificado de manera consistente durante nuestros monitoreos
de la línea base.
2. Substrato secundario: es aquel que crece sobre otros organismos. Esta capade organismos denominada epibiótica no es tan conspicua en Galápagos
como en las zonas templadas donde existe un crecimiento abundantede macroalgas (bosques de Kelp), sin embargo, siempre están presentes,
creciendo principalmente sobre balanos, algas incrustantes, algas foliosas, etc.

Tunicado Aplidium sp.y poliqueto colonial
Salmacina tribranchiata (Imagen: M. Vera)

Coral suave, Heterogorgia Hickmani(Imagen: M. Vera)

52 Manual de Monitoreo Submareal

Algunas observaciones sobre la toma de datos• Antes de realizar el conteo, anotar todas las especies presentes en el primer
cuadrante.
• Asignar un valor 'R' a la especie más abundante, pero tener cuidado de nosubestimar su representatividad al asignar valores reales a las otras especies.
Luego se puede ingresar 'R' o 'Resto' en la hoja de ingreso de datos sésiles paraque se calcule automáticamente este valor.
• En caso de existir sedimento sobre el fondo marino, tratar de removerlo agitando suavemente la superficie con la palma de la mano, esto permitirá un mejor
reconocimiento de las especies presentes.
• Registrar primero las especies más raras.
• Distinguir entre coral blanqueado y balanos vivos o muertos. Por ejemplo, cadauno tuvo un código diferente en la base de datos de la FCD que termina con *B
o *M (ej. PavCla*B para Pavona clavus blanqueado).
• Colocar el código de cada especie en el lado izquierdo de la hoja de campo
inmediatamente después de finalizar la inmersión.
• La política de los viajes de campo es ingresar los datos en una base remota
submarina lo más pronto posible, mientras los detalles aún están presentes enla memoria.

• Anotar cualquier observación de especies crípticas en el transecto (ej. caballode mar o pez pipa) y nudibranquios (babosas de mar) para luego transmitir alos buzos que estén trabajando en los otros grupos de taxa.
• Normalmente, el buzo que trabaja con sésiles también realiza el conteo ocolección de mesogastrópodos dentro los mismos cuadrantes (ver sección 10).

Otras consideraciones

Durante la toma de datos de organismos
sésiles, es buena practica anotar si seencuentran especies de macroinvertebrados
móviles pequeños o peces crípticos/
camuflados como nudibranquios, liebres demar, langostas, caballos de mar y pez pipa.
Estas especies no siempre están registradas
por los demás miembros del equipo trabajandosobre áreas mas amplias, pero pueden
incluirlos como presentes en sus datos.

Para determinar la biomasa de una especie o de un grupo funcional a partir dela cobertura, se coloca un pequeño cuadrante sobre el fondo marino en un áreadeterminada (1x1, 5x5, 10x10 cm) y con un cincel o espátula se raspa el fondo yse colecta la muestra usando un método de succión al vacío. Posteriormente, sepuede extrapolar la biomasa al establecer una relación entre el peso de la muestra
colectada y la cobertura de dicha especie o grupo funcional. La relación entre elporcentaje de cobertura y la biomasa puede ser lineal o cuadrática, dependiendode la estructura vertical de cada especie.
Otro método más rápido y eficiente en el campo para determinar el porcentaje
de cobertura es el muestreo con cuadrantes fotográficos fijos (Foster, et al.
1991). Los patrones de diversidad de especies se determinan al tomar fotos decuadrantes normalmente de 0.25 m². Para esto, se utiliza un lente de 15 mm y elequipo fotográfico se coloca sobre un marco de aluminio fijo a una distancia de
30 cm con respecto al sustrato (Smith y Witman, 1999) para que la imagen tenga
una resolución lo suficientemente buena para identificar organismos mayores a2 o 3 mm. (Foster et al 1991 Witman, 1985). Una vez revelado el film, las imágenes
se proyectan sobre papel blanco con el extremo de la imagen sobre un marco
rectangular dividido en 100 cuadrículas. Finalmente, el porcentaje de cobertura se
determina, al igual que en el campo, al contar el tipo de organismo que coincide
con la intersección de cada cuadrícula (Foster et al, 1991, Witman et al., 1985).
Avances recientes utilizan cámaras digitales por su facilidad para manipularimágenes y para aplicar el uso de programas multiespectrales que pueden apoyaren el análisis de grandes cantidades de imágenes con un respaldo estadístico(MultiSpec, Purdue University, IL/ CPCE, Nova University).
Sin embargo, el método de cuadrantes fotográficos no es eficiente para determinarla abundancia de organismos sobre fondos cubiertos por algas foliosas densas quetapan a otros organismos (Foster, et al, 1991; Witman, 1985) porque subestiman lamegafauna ampliamente dispersa (Smith y Witman, 1999). Sin embargo, este puede
ser un método complementario al anterior, sobre todo para realizar comparaciones
del paisaje a lo largo del tiempo y tener un registro visual permanente del substrato
estudiado. Algunas de estas técnicas están descritas en la sección 16.
Caleta Tagus a 6 m, Isabela. (Imagen: S.Banks)

Poliqueto arbol de navidad,
Spirobranchus giganteus (Imagen: M. Vera)

Nudibranquio Doridaceo no identificado(Imagen: D. Ruiz)

Nudibranquio, Tambja mullineri(Imagen: G. Edgar)

Edición por Stuart Banks 53

8"Sé un pez. Desarrolla tus branquias
con tu trabajo, tu promedio deconsumo de aire podría mejorar.
Aprende a flotar en la columna deagua, a escribir mientras luchas
contra la corriente..."Lauren Garske-García
Ex voluntaria FCD-Biomar

Cabrilla, Epinephelus labriformis (Imagen: R. Gallardo)

Peces demersales
de arrecife yvertebrados marinos
A diferencia del censo de macroinvertebrados móviles y sésiles, el monitoreo depeces requiere de un mayor énfasis en la estimación visual de la abundancia ydiversidad de individuos. Por tal razón, es importante que los buzos que trabajan
en cada equipo durante el monitoreo comparen sus estimaciones de talla yabundancia relativa. Por ello, ambos grupos deben trabajar en sitios cercanos yaparejados que constituyan réplicas con condiciones similares. En general, hemos
intentando mantener a los mismos buzos para el censo de peces para limitar, en lo
posible, errores humanos en el censo visual.
Puede suceder que la cantidad y diversidad de peces en un sitio sea espectaculare incluso abrumadora. Esto conlleva un cierto desafío para capturar de manera
representativa la comunidad de peces en el sitio. Sin embargo, con práctica ysiguiendo algunos pasos sencillos, es muy factible realizar un buen conteo depeces de manera sistemática. También puede ayudar la comparación de losdatos con los de alguien con mayor experiencia y respirar profundamente antes
de empezar.

Lenguado, Bothus mancus. (J.C. Moncayo)

El cachudo de cola roja Xanthichthys mento(Imagen: G.Edgar)

54 Manual de Monitoreo Submareal

Para la identificación de las especies de peces de Galápagos, los libros más útiles
para una consulta rápida son Reef Fish Identification: Galápagos (2da edición) por
Paul Humann (2003) y Fishes of the Tropical Eastern Pacific por STRI (Gerald R.
Allen y D. Ross Robertson, 1994), los cuales también vienen en formato electrónico
actualizado para instalar en el computador. La referencia más completa es Fishesof Galápagos por Jack S. Grove y Robert Lavenberg (1997), y es útil para aclarar
referencias en el laboratorio y para profundizar en averiguaciones entre especies
parecidas o poco comunes (incluye historia natural). En general, Allen y Robertson(1994) brindan una información precisa y útil, incluyendo una lista de especies dela región, y es relativamente fácil consultar en el campo.
La unidad mínima de muestreo para peces es un tramo de 50 m de longitud, lo cualestá referido como un 'Bin' en la base de datos. Cuando los transectos solo tienen
50 m de longitud, el lado de la cinta que está expuesto al agua azul se denomina
Bin 1, mientras que la parte en el lado de la costa se denomina Bin 2.

Por ejemplo, si los transectos son de 100 m, hay 4 Bins de 50 m de largo distinguidos
por B1-4. En casos particulares se debe anotar cuál Bin corresponde con qué tramo ycon qué profundidad en las notas del formulario de 'Dive' en la base de datos remota.
Por lo general, los transectos son de 50 m de largo y el buzo que cuenta peces inicia
su transecto por el lado expuesto al mar a 15 m de profundidad (Bin 1). Este es ellado opuesto al del buzo que realiza monitoreo de macroinvertebrados móviles.
Esta medida reduce la perturbación que la presencia de buzos causa a los peces
y mejora las posibilidades de registrar especies pelágicas (ej. jureles), que suelen
entrar a la zona de monitoreo por las aguas abiertas y la transitan rápidamente.
El área de monitoreo se establece al formar un túnel imaginario de 5 m a cadalado de la cinta y 5 m por encima del fondo marino dentro del cual se registran yse cuentan las especies de peces presentes (figura 8-1). En el caso de paredes
verticales, la amplitud se transforma para incluir a todas las especies presentes
por debajo y por encima del transecto en un radio de 5 m a cada lado. La tercera
dimensión se añade al incluir a todas las especies presentes en una extensiónde 5 m perpendicular al transecto. De esta manera, en cada sitio el investigador
colectará datos para peces en un espacio de 10 m de ancho, por 5 m de alto y 50
m de largo, formando dos túneles en cada profundidad de 2500 m3 en total. Cada
sección de 1250 m3 es considerada como una réplica del transecto, aunque sequiere evitar que sean psuedoréplicas.
Se intenta reducir este efecto manteniendo una distancia de 2 m entre los 2
tramos. El mismo transecto es empleado para contabilizar organismos sésiles ymacroinvertebrados móviles por otro buzo del equipo. En el caso de los transectosde 100 m (normalmente solo para peces), se realizan cuatro réplicas de 5 m x
5 m x 50 m en cada profundidad, dando un total de 10 000 m3 muestreados.
La interpretación de la banda de ancho y la altura de cada transecto debe serverificada en tierra hasta que el investigador sea consistente de la estimación delárea. La ejecución de cada transecto de 5 m x 5 m x 50 m le tomará al investigador
entre veinte y treinta minutos, dependiendo de la abundancia y diversidad de lospeces y de la estructura del substrato en cada sitio.

Damisela cola amarilla, Stegastes arcifrons(Imagen: G. Edgar)

Caga Leche, Dermatolepis dermatolepis(Imagen: G. Edgar)

Morena cebra, Gymnomuraena zebra(Imagen: G. Edgar)

Figura 8-1: Muestreo de peces demersales por 2 pasillos de 5 m x 50 m2. El buzo
utiliza la cinta como referencia pero debe estimar el límite de 5 m de monitoreo ymantener una distancia de 2 m entre los tramos de ida y vuelta (B1 y B2) para evitar la
psuedoreplicación en el sitio.

Edición por Stuart Banks 55

Tabla 8-1: Intervalos de tallas
aplicados para el monitoreo depeces con su referencia en la basede datos submarino.

Pez brujo, Scorpaena mystes(Imagen: R. Gallardo)

Tallas (cm)base datos

Rango (cm)Tallas (cm)base datos

Rango (cm)Tallas (cm)base datos

Rango (cm)1

0 - 1.030

25.1 - 30.0

110

100.1-110.0

2.5

1.1 - 2.5

35

30.1 - 35.0

125

110.1 - 125.0

5

2.6 - 5.0

40

35.1 - 40.0

150

125.1 - 150.0

7.5

5.1 - 7.5

50

40.1 - 50.0

175

150.1 - 175.0

10

7.6 - 10.0

60

50.1 - 60.0

200

175.1 - 200.0

12.5

10.1 - 12.5

70

60.1 - 70.0

225

200.1 - 225.0

1512.6 - 15.0

80

70.1 - 80.0

250

225.1 - 250.0

20

15.1 - 20.0

9080.1 - 90.0

275

250.1 - 275.0

25

20.1 - 25.0

100

90.1 - 100.0

300

275.1 - 300.0

Registrando la riqueza y densidad de peces demersales

Tambulero, Sphoeroides angusticeps(Imagen: R. Gallardo)

Candil, Sargocentron suborbitalis(Imagen: G. Edgar)

Cardumen de Gringos, Paranthias colonus(Imagen: G. Edgar)

Por orden de importancia, el buzo debe fijarse primero en el registro de diversidad
de peces, luego en su cantidad dentro el transecto y, por último, en sus tallas.
Normalmente, con la práctica y los buceos dedicados a la calibración entre
observadores, es posible llegar a valores comparables y reproducibles entre buzos.
A pesar de que siempre apuntamos al nivel más alto de precisión en la colecciónde información, aceptamos que solo somos humanos, y el análisis multivariado
de los datos comunitarios aplica técnicas estadísticas que reducen el efectode errores moderados en las estimaciones por la conversión logarítmica o raíz
cuadrada de los datos de abundancia.
En la actualidad, intentamos registrar todas las especies, incluyendo especies
pequeñas y crípticas. El motivo es colectar información sobre la riqueza –aúnalgunas especies son excluidas de los análisis cuantitativos de abundancia debido
a la improbabilidad de su detección consistente–. Un buzo puede detectar un pez
escorpión o un caballo de mar camuflado sobre el substrato, pero la probabilidad
de contabilizar cada uno de ellos dentro del transecto es muy reducida. En estos
casos, una indicación de la presencia de estas especies puede proveer información
cualitativa válida. Tales detalles de presencia de especies crípticas son tomados
en cuenta para un análisis posterior. Por esta misma razón, es importante registrar
cualquier especie presente en el sitio en cada profundidad, independientementede si están dentro o fuera de las dimensiones del transecto establecidas. Paramantener un registro sistemático de la abundancia relativa, normalmente el buzo
trabaja anotando todo lo que ve en intervalos de 10 m (o menos, si la visibilidad es
menor), y solo hasta el límite de 5 m por fuera del transecto. En el caso de que hayamuchos cardúmenes mezclados, es útil primero hacer una lista de las especies
visibles, fijándose primero en los pelágicos y transitorios que no son territoriales
dentro del transecto mismo, y luego hacer estimaciones por tallas.

Para mantener un registro sistemático de la abundancia relativa, normalmente el buzo trabaja
anotando todo lo que ve en intervalos de 10 m (o menos, si la visibilidad es menor), y solo
hasta el límite de 5 m por fuera del transecto.
Para todas las especies registradas dentro del transecto se estima la estructura detallas. La dimensión calculada representa la longitud total de un pez, comprendida
entre la punta del hocico hasta el extremo más alejado de la cola. Los tamañosde clase usados inician con los juveniles de menos de 1c m hasta 3 m para lostiburones. En casos excepcionales (tiburón ballena de 18 m, orcas o hasta calamar
gigante en el transecto) se anotan los detalles en los comentarios del buceo.
56 Manual de Monitoreo Submareal

Tabla 8-2: Rangos típicos de tallas para una selección de peces comunes.
Especies

Nombre común

Moda (Rango)

Anisotremus interruptus

Zapatilla

25 (20-30)

Apogon atradorsatus

Cardenal punta negra

7.5 (1-10)

Bodianus diplotaenia

Vieja ribeteada

30 (1-50)

Chaetodon humeralis

Mariposa de tres bandas

12.5 (7.5-15)

Chromis atrilobata

Castañeta cola de tijera

10 (5-12.5)

Cirrhitichthys oxycephalus

Halcón de coral

7.5 (5-10)

Cirrhitus rivulatus

Carabalí25 (20-35)

Coryphopterus urospilus

Gobio luz roja

5 (2.5-7.5)

Epinephelus labriformis

Cabrilla piedrera

30 (12-50)

Girella freminvillei

Chopa penumbre

35 (20-40)

Halichoeres dispilus

Vieja camaleón

7.5 (2-20)

Halichoeres nicholsi

Vieja soltera

25 (10-40)

Holacanthus passer

Pez bandera

25 (10-40)

Johnrandallia nigrirostris

Mariposa barbero

12.5 (5-15)

Labrisomus dendriticus

Trambollo bravo

12.5 (5-15)

Lepidonectes corallicola

Trambollito triple aleta de Galápagos

5 (2.5-7.5)

Lythrypnus gilberti

Gobio de bandas azules de Galápagos

2.5 (1-2.5)

Microspathodon dorsalis

Damisela gigante

25 (20-30)

Mycteroperca olfax

Bacalao50 (30-70)

Ophioblennius steindachneri

Borracho Mono

15 (5-25)

Paranthias colonus

Gringo20 (5-30)

Plagiotremus azaleus

Trambollito diente de sable

7.5 (5-10)

Prionurus laticlavius

Cochinito barbero

25 (15-40)

Scarus ghobban

Loro barba azul

40 (35-60)

Serranus psittacinus

Serrano12.5 (5-20)

Stegastes leucorus beebei

Damisela cola blanca del norte

15 (1-20)

Sufflamen verres

Cochito naranja

30 (15-40)

Thalassoma lucasanum

Vieja arco iris

5 (1-12.5)

Zanclus cornutusÍdolo moro

15 (12.5-20)

Los valores se redondean al inmediato superior; por ejemplo, si un pez mide 1.5
cm, su tamaño será registrado dentro de la clase de talla 2.5 cm. Estimar las tallas
puede ser un reto, por lo tanto se recomienda el uso de una técnica no invasiva
de verificación con medidas de referencia que puedan ser usadas bajo el agua.
El conocer las dimensiones de la tabla de datos, de la distancia entre el pulgar
y el dedo índice extendidos, y de la distancia entre el hombro y la mano opuesta
cuando el brazo está extendido hacia un lado para formar un plano, constituyenbuenas referencias. Esto elimina el tener que transportar equipo adicional bajo elagua y provee un marco de referencia adecuado para la verificación de tallas que
pueden ser estimadas de forma equivocada fácilmente debido a la magnificaciónde tamaño provocada por el medio. La tabla 8-2 incluye una lista de algunas de las
especies más comunes y sus rangos de tamaño típicos.
Información adicional que debe ser incluida en cada hoja de datos incluye el nombredel sitio, la fecha, el nombre del buzo, el tipo de zona (extractiva, no extractiva), eltiempo de inicio de la inmersión, la visibilidad, la fuerza del oleaje, la fuerza de lacorriente y la temperatura. Los últimos cuatro elementos deben ser registrados,y normalmente son responsabilidad del coordinador de cada grupo. La visibilidad
debe ser determinada como la distancia entre un punto dentro del transecto y el

Cardumen de Chopa penumbra,
Girella fremenvillei (Imagen: R. Gallardo)

Damisela cola blanca, Stegastes beebei(Imagen: G. Edgar)

Edición por Stuart Banks 57

punto más lejano a partir del cual se puede identificar claramente a un pez de 15
cm de longitud; en este caso, las sombras no son válidas. Incluir el nombre de otros
buzos dentro del grupo puede ser útil cuando se necesita juntar los datos de cadatransecto o cuando otras personas están revisando la información. Las coordenadas
también deben ser incluidas cuando están disponibles. Un ejemplo de cómo debe
lucir una hoja de datos se muestra en la figura 8-2 con el número de peces por cadaespecie y su estructura de tallas correspondiente dentro del paréntesis.

Trambollo bravo, Labrisomus dendriticus(Imagen: R. Gallardo)

Pez gallineta de Galápagos,
Prionotus miles (Imagen: R. Gallardo)

Figura 8-2: Ejemplo de una hoja
de datos de campo para peces yvertebrados marinos. La hoja está
dividida en 4 partes que representancada lado (T1 agua abierta/T2 costa)
en los dos transectos a 15 m y 6 m deprofundidad.

58 Manual de Monitoreo Submareal

Mientras que cada buzo registrará a las especies de acuerdo con su nombre(español, inglés o latín) o realizará un gráfico que le resulte familiar, esta
información requiere ser convertida a un código de especies cuando los datos
son ingresados a la base de datos. Una lista de los códigos utilizados está en laBase de Datos Submarina. Los códigos cortos (segunda columna) se componende tres a cuatro letras (familia, género, especies y subespecies) y son bastanteútiles para utilizar durante el buceo por el rápido ingreso a la base de datos. El
formato básico para los códigos combina la primera letra de la familia, el género
y la especie (ej. PSA = Stegastes arcifrons (Familia: Pomacentridae)). En algunos
casos, algunos códigos pueden repetirse, por lo tanto, un cuarto carácter esañadido para formar un código único. Un ejemplo de esto sería LLA y LLAR,
donde el primero es usado para Lutjanus aratus y el segundo para Lutjanus
argentiventris (Familia: Lutjanidae).
El formulario de entrada de datos de peces en la base de datos tiene para escoger
entre el nombre común, el código corto o el código de especies.

Observaciones sobre especiesde vertebrados costeros
Aunque siempre hubo observaciones registradas sobre la presencia de avesmarinas, tortugas, iguanas marinas, lobos marinos, delfines y ballenas, solo desdeel 2012 se agregaron estos grupos dentro las tareas del monitoreo de peces. Asícomo en el censo de peces, se estima la abundancia y la talla (largo del cuerpo
incluyendo cabeza y cola). Se anota solo su presencia si fuesen observados fueradel transecto. Los datos se ingresan en el mismo formulario para peces y se tienen
códigos correspondientes para cada una de las especies.

Otras consideraciones
Idealmente, tres personas deberían ser entrenadas en el conteo y estimación detallas de peces. Normalmente, solo dos individuos colectarán esta información(uno por cada equipo); pero en caso de enfermedad o de no estar disponible, una
tercera persona tendrá que reemplazarlo y, por lo tanto, es importante que esta
persona conozca los métodos y que tenga experiencia con el manejo de datos.
Trabajar en la ecología de peces de Galápagos puede ser desalentador. No es
una tarea fácil el aprender más de 200 especies, sus marcas características, sus
numerosos nombres y códigos. Tampoco es fácil aprender a contar las densidades
y a estimar los tamaños en el campo cuando existen miles de individuos en unárea y en un momento determinados. Escuelas de gringos (Paranthias colonus) tepueden volver ciego.
Sin embargo, existen algunos trucos que pueden ayudar:• A medida que se estima la abundancia relativa por especie, asegúrate deestimar aquellas especies poco comunes y conspicuas (Ej. Dermatolepis
dermatolepis, Caulolatilus princeps, Triaenodon obesus) y aquellas especiesde valor especial o comercial (ej., Mycteroperca olfax, Sphyrna lewini). Especies
comunes y abundantes como Prionurus laticlavius, Stegastes leucorus beebei y
Ophioblennius steindachneri son la siguiente prioridad porque forman una parte
importante dentro de la comunidad. En algunos casos es difícil contar todos
los individuos porque la especie es muy abundante (ej. Apogon atradorsatus oParanthias colonus), por lo tanto, necesitarás estimar su abundancia lo mejor
posible. Para especies pequeñas (ej., Lepidonectes corallicola, Lythrypnus
gilberti, Malacotenus tetranemus) y sobre todo crípticas (ej., Scorpaena plumieri
mystes, Coryphopterus urospilus) es poco probable que puedas detectar todos
y cada uno de los individuos presentes en el transecto, pero esto mejorará conla práctica y aun constituye un aporte cuantitativo válido de su papel relativo
dentro de la comunidad. Finalmente, estima las tallas de todos los individuos
registrados.
• Tomate unos minutos al inicio de cada transecto y mira a tu alrededor. Observa
qué especies están presentes y anótalas en tu tabla de datos. Esto no solo
servirá para registrar la riqueza de especies, sino que también será el inicio dela lista que usarás para registrar las densidades y los tamaños y te ayudará aubicar ciertas especies en tu propia lista durante el buceo.
• Al final del transecto se debe tomar un minuto o dos para revisar la hoja de datos y llenar cualquier información faltante. Es recomendable realizar esto al final
del buceo o inmediatamente después de salir a la superficie.
• Algunas personas prefieren registrar las cinco o diez especies más comunes(ej., Prionurus laticlavius, Halichoeres dispilus, Paranthias colonus, Stegastes
leucorus beebei, Holocanthus passer) al inicio de su hoja de datos antes deingresar al agua, siempre en el mismo orden. Esto también facilitará la ubicaciónde cada especie al momento de llenar la información, particularmente cuando tu
lista se ha incrementado a treinta o más especies. Luego del buceo, asegúrate
de tachar cualquiera de estas especies que no estuvieron presentes dentro detu transecto para no incluirlas como presentes.

Carabalí, Cirrhitus rivulatus (Imagen: R. Gallardo)

Cardumen de Cardenales, Apogon atradorsatus(Imagen: R. Gallardo)

Pez murcielago, Ogcocephalus darwini(Imagen: R. Gallardo)

Chopa rayado, Kyphosus analogus(Imagen: G. Edgar)

Edición por Stuart Banks 59

Pez chile lagarto, Synodus lacertinus(Imagen: G. Edgar)

Cardumen de Ojon rayado, Xenocys jessiae(Imagen: G. Edgar)

Trambollo triple aleta, Lepidonectes corallicola(Imagen:G. Edgar)

Bacalao, Mycteroperca olfax(Imagen: R. Gallardo)

60 Manual de Monitoreo Submareal• Recuerda que la experiencia te ayudará a mejorar tu habilidad para detectar
especies. Aprende algo sobre su historia natural para predecir sus distribuciones.
Algunas especies normalmente se registran como parejas de apareamiento(ej., Zanclus cornutus y los miembros de la familia Chaetodontidae); si ves
alguna, realiza una búsqueda rápida de su pareja, ya que probablemente estará
cerca. Especies de la familia Scaridae, y Labridae usualmente tienen varias
morfologías o fases a lo largo de su historia de vida, aprende a identificar cadauna de estas fases. Otras especies prefieren microhábitats como interfaces dearena (ej. Serranus psittacinus, Coryphopterus urospilus), céspedes de algas(ej. Stegastes leucorus beebei, Lythrypnus gilberti), grietas entre las rocas (ej.,Apogon atradorsatus, Myripristis leiognathos), bordes o salientes (ej. Epinephelus
panamensis), corales negros (ej. Cirrhitichthys oxycephalus, Oxycirrhites typus),o en la columna de agua (ej. Mycteroperca olfax, Melichthys niger, Paranthias
colonus). Busca a las especies pelágicas (ej. Sphyraena idiastes, Seriola rivoliana,
Decapterus sanctae-helenae) que pasan frecuentemente a lo largo de losarrecifes rocosos o en la interface entre los fondos arenosos y los fondos duros.
Algunos peces son asustadizos o tímidos (ej. Oplegnathus insignis, Rypticus
nigripinnis), por lo tanto, necesitas aprender a estar alerta y tener un buen ojo
para detectar estas especies. En algunas ocasiones, si esperas un momento,
uno de estos individuos se acercará lentamente y será posible identificarlos.
• Para determinar la densidad, siempre que sea posible, cuenta y estima solo
cuando sea necesario. Cuando estimes escuelas de peces, un buen método es
poner tu mano frente a un grupo y contar cuántas veces el ancho de tu mano
cubre a un grupo en particular. Posteriormente, cuenta el número de individuos
que cubre una mano y multiplica este valor por la estimación final. Con especies
pequeñas como el Lythrypnus gilberti, estima cuántos individuos hay por metro
cuadrado. Posteriormente, estima el tamaño del área general que cubren ynuevamente multiplica estos dos valores entre sí.
• Al estimar las tallas, usa referencias. Ten a la mano referencias de distintos
tamaños (ej., tu mano, tu tabla de datos, la longitud de tu brazo). Estos elementos
son extremadamente útiles.
• Busca peces juveniles. Esto es importante para desarrollar un mejor
entendimiento de los patrones estacionales y de las tendencias de reclutamiento
de una población. Esto es fundamental cuando consideres que existen cuatro ocinco zonas biogeográficas en Galápagos y tales patrones son normalmente una
función del ambiente físico (ej. temperatura). Reclutas de especies fácilmente
identificables (usualmente 1-2 cm de largo) incluyen Apogon atradorsatus,
Stegastes arcifrons, Stegastes leucorus beebei, Halichoeres nicholsi y Bodianus
diplotaenia. También es importante registrar individuos más pequeños (+10cm) de especies más grandes como Epinephelus labriformis y Epinephelus
panamensis.
• Comunícate con tu equipo. Mientras los buzos están realizando conteos desésiles y macroinvertebrados móviles, estarán fijándose en detalles entre lasrocas. El buzo que está contando peces estará más consciente del entorno deltransecto y sabrá del progreso de los demás. Anota arrecifes o formaciones
distintivas que puedan ayudar con la navegación si regresas al sitio.
• Por último, ¡disfruta de la experiencia! Es un circo bajo el agua (sin el pez payaso,
ya que no tenemos esa especie en la RMG) pero es un circo hermoso. Debes
reconocer que toma tiempo aprender cómo identificar y medir cada especie.
Probablemente tomará más tiempo aprender cómo manejar tu atención bajo elagua y calibrar tus observaciones. Tomate tu tiempo para estar en ese lugar y
conocer su entorno. Es importante saber por qué estás trabajando para colectar
toda esta información, por qué has escogido este trabajo. Recuerda que túestás buceando en uno de los lugares más increíbles del mundo –una actividad
y un lugar que la mayoría de personas solo pueden soñar–. Aprecia lo bella quepuede ser la naturaleza y que tus esfuerzos ayudarán a conservarla.

Pastoreo por el erizo Lytechinus semituberculatus Punta Espinoza a 6 m, Fernandina. (Imagen: S.Banks)

Macroinvertebrados
móviles
Este grupo incluye animales visibles y normalmente móviles como pepinos,
erizos, estrellas de mar, langostas, churos, quitones, abalones, pulpos, entre
otros. Básicamente, si no está pegado al fondo, se mueve con sus propias patas,
tentáculos o espinas y no es un pez, debe caer dentro este grupo de monitoreo.
Técnicamente, los macroinvertebrados incluyen a los animales más grande de
1 mm. Aquí, por razones de evaluación, comparación y tiempo limitante de buceo,
restringimos a las especies más grandes de 2 cm a plena vista (no completamente
enterrados o escondidos bajo las rocas). Los demás organismos más pequeños
requieren otro tipo de monitoreo más dirigido y especialista (ej. mesogastrópodos).
El monitoreo de invertebrados móviles se centra en la medición simultánea
de la densidad y abundancia de varias especies a la vez, incluyendo especies
comerciales y no comerciales. Para ello se evalúa principalmente la densidad en
cada uno de los 20 cuadrantes de 1 m por 5 m ubicados a lo largo de una cinta de
50 m de longitud sobre el substrato, todo a una misma profundidad (figura 9-1).
El buzo que cuenta macroinvertebrados móviles, normalmente es el encargado decolocar y retirar el transecto. En caso de que esté haciendo sus primeras prácticas
en los sitios, el buzo de censo de peces puede colocar el transecto para que este lo
retire después. Normalmente, el líder del grupo indica dónde empezar el transecto
y la dirección general para colocarlo (ver sección 8).
Hay varias razones para que el buzo de macroinvertebrados coloque el transecto.
Con la notable excepción de sitios dominados por erizos de mar, el monitoreo
normalmente no es tan exigente comparado con el de peces o sésiles, lo cualresulta en un mejor aprovechamiento del tiempo a cada profundidad por cadagrupo de monitoreo. También representa una buena oportunidad para que nuevos
integrantes ganen confianza en las actividades de monitoreo bajo el agua y para
conocer el perfil de los sitios. En todo caso, un nuevo integrante debe ser siempre
asistido y guiado por el líder del grupo e incluso puede compartir su censo entre
dos buzos sin afectar la calidad en la toma de datos.

9"Nunca he sido herido por una
criatura del mar, a excepción de lasmedusas y erizos de mar".
- Peter Benchley,
Autor de "Jaws"

Estrella de mar, Astropecten armatus.
(Imagen: CC FCD)

Estrella de mar, Nidorellia armata(Imagen: M. Parra)

Edición por Stuart Banks 61

Figura 9-1: Transecto de muestreo de macroinvertebrados móviles. El buzo
ha colocado el transecto y regresa por el lado costero tomando datos en
bloques cada 5 m. La numeración de cada bloque B1 - B20 se refiere alingreso de datos en la base de datos. A llegar al inicio de la cinta métrica, se
hace la vuelta por el lado de agua abierta terminando con el buzo que cuenta
especies sésiles a 50 m y se está listo para retirar el transecto.

Churo Blanco, Hexaplex princeps(Imagen: G. Edgar)

El buzo siempre empezará el conteo de las especies del lado de la cinta expuesta
a la costa, independientemente del extremo en el que se encuentre. A lo largo dela cinta de 50 m se formarán segmentos más pequeños de 5 m2, estos segmentos
podrán ser calculados al extender el brazo o una barra de hierro 1 m en dirección
perpendicular a la cinta. En todos los casos, siempre se estimará un metro hacia
cada lado del transecto, independientemente del grado de inclinación del substrato(así se medirá el área superficial grosso modo). Por ejemplo, en una pared vertical,
el ancho de banda se establecerá de forma vertical en vez de hacerlo en forma
horizontal, como ocurre en las superficies planas. También es útil marcar con
pintura y/o colores las divisiones cada 5 m en la cinta métrica.

A lo largo de la cinta de 50 m se formarán segmentos más pequeños de 5 m2, estos
segmentos podrán ser calculados al extender el brazo o una barra de hierro 1 m en dirección
perpendicular a la cinta.
En cada segmento de 5 m2 se realizará un conteo independiente de cada una delas especies de macroinvertebrados móviles observadas. Aquellos individuos
que no son visibles por estar debajo de las rocas o enterrados en la arena no
serán tomados en cuenta en este procedimiento de monitoreo. Los intervalos
de medición se registran como se indica en la figura 9-1, del B1 al B10 en la parteizquierda del transecto, y del B11 al B20, en la parte derecha del mismo, de manera
que correspondan a los segmentos de medición registrados en la Base de Datos
de Monitoreo Ecológico.

Estrella de mar, Phataria unifascialis(Imagen: R. Gallardo)

62 Manual de Monitoreo Submareal

Una vez terminado el lado izquierdo de la cinta, el buzo regresará del lado opuesto
realizando el mismo conteo. Sin embargo, en sitios de baja biodiversidad oabundancia, alta corriente u oleaje, podría ser más práctico registrar de manera
consecutiva los segmentos de 5 m2 a ambos lados del transecto. Bajo estas
circunstancias, los datos se registran en B1/20, B2 /19, B3/18, según su progreso alo largo de la cinta. Si uno de los macroinvertebrados es muy abundante, se estimala abundancia de este organismo en tres cuadrantes a lo largo del transecto (alprincipio, en el medio y al final de la cinta) y luego se extrapola la abundancia parael resto del segmento monitoreado.

La forma en cómo se toman las tallas dependerá del tipo de organismo a ser medido.
Cada buzo debe tener un trozo corto (~30 cm) de cinta métrica o un calibrador
colocado en su tabla de datos. En el transcurso del censo visual es mejor tomarlas medidas de los individuos de especies menos abundantes o poco comunes(como estrellas del mar, pepinos, o churo blanco Hexaplex princeps). En el casode tener cientos de erizos en el transecto es mejor medir una selección al azar
de por lo menos 20 individuos. A excepción de los pepinos del mar, las medidas
deben ser rectas (figura 9-2). Se mide el largo de la concha para los gasterópodos,
el diámetro para los erizos, el radio desde la boca hasta el brazo más largo delas estrellas de mar y el largo dorsal del pepino desde la boca hasta el ano. En elejemplo de las estrellas de mar, se las debe levantar para tomar medidas desdela superficie ventral. En el caso de los pepinos de mar, no se debe los manipulardemasiado para evitar que se estresen y cambien su longitud. Algunas especies nose prestan para tomar medidas exactas en el campo por estar dentro de agujeros,
ser tóxicos o difíciles de manipular. Entre ellos, no tomamos tallas para los erizosde espina larga Centrostephanus coranatus y Diadema mexicanum. Los datos detallas pueden ser colocados junto con los de abundancia de cada especie en la
hoja de datos (figura 9-3).

Langosta espinosa roja, Panulirus penicillatus(Imagen: R. Gallardo)

Figura 9-2: Medidas de losmacroinvertebrados móviles para losgrupos principales (gasterópodos,
erizos, estrellas del mar yholoturoidea).

Figura 9-3: Ejemplo de hoja de datospara macroinvertebrados móviles
tomados en el campo para las dos
profundidades (15 m y 6 m).

Langostino de Galápagos, Scyllarides astori(Imagen: J. C. Moncayo)

Al final del muestreo, cuando el buzo ha terminado de tomar tallas, deberá explorar
las áreas contiguas al transecto para anotar cualquier observación nueva sobre
otras especies de macroinvertebrados que no han sido previamente registradas
dentro del transecto. Para esto se ha desarrollado una sección dentro de la Basede Datos de Monitoreo Ecológico que registra la presencia de dichas especies,
asignándoles un valor de uno para indicar su presencia.

Pepino de mar, Isostichopus fuscus(Imagen:M. Vera)

Edición por Stuart Banks 63

Otras consideraciones

Erizo de mar, Diadema mexicanum(Imagen: G. Edgar)• Deben tener cuidado de no acercarse demasiado a las agrupaciones de Diadema
mexicanum para evitar lastimarse, particularmente en condiciones de oleaje enaguas someras.
• Utilicen guantes para evitar cualquier lesión o irritación, particularmente cuando
se manipula la cinta del transecto por las rocas con balanos e hidroides.
• Al momento del muestreo se pueden colectar algunos especímenes para identificar y determinar la estructura de tallas, la relación talla-peso, el sexo y cualquierotro dato biológico de interés según los proyectos de investigación en marcha.
• Cuando colocan el transecto, es posible que se vean especies de peces pelágicoso transeúntes y/u otras especies de interés (pingüinos, cormoranes, iguanas,delfines, etc.) que huyan rápidamente de los buzos. Asegúrate de mencionar
estos detalles al buzo que está realizando el conteo de peces.
• Si terminas tu transecto con tiempo y las condiciones son desafiantes, puedes
ayudar al buzo que realiza el conteo de sésiles a sostener bien su cuadrante.
Una mano extra en una pared vertical puede ser muy útil.
• Debes anotar la presencia de cangrejos ermitaños pero no la abundancia por la
dificultad de averiguar cuáles conchas que están ocupadas.
• Respeta los animales si tomas medidas u otros datos y, en la medida de lo
posible, devuelve a los individuos al lugar en donde los encontraste.
• En el caso de realizar medidas de peso en el barco, no transportes individuos
vivos entre sitios y devuélvelos al agua en la medida de lo posible. Por esta
razón es importante la organización y asistencia inmediatamente después delas inmersiones entre los participantes del crucero.

Pepino de mar, Holothuria fuscocinerea(Imagen: G. Edgar)

Pulpo, Octopus oculifer (Imagen: R. Gallardo)

64 Manual de Monitoreo Submareal

Thais planospira 'Ojo de Judas', Wolf. (Imagen: G.Edgar)

Mesogastrópodos
Muchos de los impactos en el ambiente marino por grupos taxonómicos
son indirectos, y lo que observamos a veces es el resultado de una cadena deinfluencias que se ha propagado luego de una perturbación puntual o crónica.
Tales perturbaciones, como la pesca intensiva o una enfermedad, normalmente
son más visibles cuando nos afectan directamente. Sin embargo, dadas lasinterconexiones y dependencias dentro de un ecosistema, es muy probable que
otras especies resulten afectadas. Pueden cambiar comportamientos, niveles dedepredación, reproducción o pastoreo. Tal vez hubo desplazamientos de especies
debido a la competencia entre un grupo de especies o, tal vez, por un suceso que
ha generado cambios estructurales en el espacio físico del ambiente abiótico.
Ciertas especies o grupos de especies son candidatos para ayudarnos a averiguar
posibles impactos porque su abundancia o presencia es un indicador sensible e
indirecto de un cambio en otra parte del ecosistema. Sin ser parte de la causa dela perturbación, son útiles para seguir en el tiempo.

10“It has long been an axiom of minethat the little things are infinitely themost important”.
Sir Arthur Conan Doyle

Figura 10-1: Identificación y conteo demesogastrópodos en el barco despuésdel buceo para devolverlos al agua deinmediato.

Por tal razón incluimos un monitoreo de mesogastrópodos, que representa ungrupo bastante diverso con más de 90 especies registradas típicamente durante
los monitoreos submareales.
El monitoreo de mesogastrópodos aprovecha que el buzo que trabaja conorganismos sésiles ya tiene su cuadrante colocado en el fondo marino. Cuando
termina el conteo de sésiles, busca todas las conchas pequeñas vivas con tamañosde hasta 2 cm, dentro del espacio de 0.25 m2 del cuadrante. Es decir, que por cadatransecto de 50 m, se tomarán 10 muestras de mesogastrópodos (ver sección 7).
En caso de que no se conozcan las especies o si el tiempo es limitante, se
coloca cada colección por cuadrante en una funda ziplock marcada para llevara la superficie. Con el apoyo de alguien en el barco, inmediatamente después delbuceo se trabaja en la identificación para devolverlos al agua antes de salir del sitio(figura 10-1).Los datos de mesogastrópodos están ingresados en la base de datos
submarina en su propio formulario.

(Imagen: G.Feldman)

Edición por Stuart Banks 65

Tiburón ballena, Rhycodon typus (Imagen: J. Green)

11

Censo de peces
pelágicos
Las especies de peces pelágicos que pasan la mayor parte de su vida en aguas
abiertas fuera de la costa son de suma importancia para la economía de las islas.
De hecho, es probable que el nivel de protección que brinda la reserva, por su
ubicación en el Pacifico Este Tropical, también juegue un papel importante a lahora de respaldar los stocks de muchas especies pelágicas pescadas por la flota
industrial en la región por fuera de los límites de la Reserva.
Entre aquellas especies que se encuentran dentro del límite de 40 m, hay algunos
depredadores topes oceánicos como los atunes, los picudos y los jureles oceánicos,
los cuales también son un objetivo de la pesca artesanal permitida y regulada por las
autoridades en las islas. También hay especies protegidas como los tiburones, lasrayas, e incluso especies grandes y curiosas como el pez sol del océano sureño Molaramsayi. A pesar de la amplia gama de especies marinas icónicas que maravillan alos visitantes de la RMG, los tiburones constituyen uno de los principales atractivosde la oferta de turismo de buceo en las islas. Hoy en día, algunos sitios como Wolf yDarwin disfrutan de fama a escala mundial debido a los avistamientos de tiburones
ballena y a las numerosas escuelas de tiburones martillo.

Pez sol oceánico, Mola ramsayi(Imagen: A. Hearn)

Desde1999, la zonificación de la RMG cuenta con la Zona 1, definida como las aguas
abiertas situadas fuera la zona costera de las islas. También se incluyen los bajos ymontes submarinos, que son sitios de alto valor para la conservación de especies
debido a su alta productividad; los ensamblajes de especies que sostiene y su potencial
como sitios de alto rendimiento para la pesca blanca.
Para mejorar nuestro entendimiento sobre este componente de la reserva se decidió
iniciar censos visuales de especies pelágicas. De esta manera, se complementan
las investigaciones de marcaje orientadas a determinar patrones de movimientos
y fidelidad de sitio para los tiburones entre la DPNG y la FCD, aumentando así lainformación proporcionada por el monitoreo costero en sitios expuestos a alta mar.
El monitoreo de peces por censo visual, tal como está descrito en la sección 12,
fue diseñado originalmente para peces demersales dentro de un área de 5 x 5 m
del arrecife. Los peces pelágicos que pasan cerca de la costa están representados,
pero pelágicos grandes como tiburones, que suelen moverse entre profundidades

66 Manual de Monitoreo Submareal

según la dinámica de la termoclina, a veces quedan fuera del área frecuentada por
los buzos, lo que conlleva a que puedan ser subestimados en el monitoreo.
En cambio, un monitoreo dedicado a peces pelágicos por buzos a media agua,
puede favorecerse a un área más extensa, limitada solo por la visibilidad en elsitio; aunque tiene la desventaja de trabajar con áreas de monitoreo imprecisas. Se
utilizan dos técnicas para los censos visuales de especies pelágicas.

Transectos lineales
El censo lo realiza una pareja de buzos. Uno anota los datos, toma la hora inicial y
final del censo y controla su duración, mientras que el segundo buzo arrastra una
boya con un GPS atado a la misma. Se realizan censos de 2 minutos de duración
nadando a una velocidad y a una profundidad constante a lo largo del arrecife, a
1 - 1.5 m sobre el fondo, registrando todos los individuos de las especies objetivodel monitoreo encontradas a lo largo del transecto y en un área de 5 m de alto y 5
m de ancho a través de este. Una vez finalizado un censo se continúa nadando enla misma dirección y profundidad por 15 segundos y se inicia el segundo. El GPS
ha de estar sincronizado con el reloj de los buzos, por lo que una vez fuera delagua se pueda determinar la longitud de cada transecto realizado (añadiendo 5 mque corresponden al final del transecto), obteniendo así el área de muestreo y su
geolocalización. Se registran datos de presencia/ausencia, número, talla (longitud
máxima estimada) y sexo (cuando es posible determinarlo). En cada buceo se
realiza un mínimo de 8 - 10 transectos en cada sitio de estudio. Se llevan a cabo en
dos profundidades: 15 m y 30 m.

Jurel negro, Caranx caballus(Imagen: G. Edgar)

Conteos estacionarios
Una pareja de buzos se sitúa en un punto de forma estacionaria, separados por 20 m
y manteniendo el contacto visual entre ellos. Cada buzo registra todos los individuos
de las especies objetivo del monitoreo dentro de un círculo estimado de 10 m de radio
hasta la superficie, indicando su presencia/ausencia, número, talla (longitud máxima
estimada) y sexo (cuando es posible determinarlo), durante una sola vuelta en su
posición. Una vez finalizada esta vuelta, se continúa el censo hasta completar dos
minutos. Al finalizar los dos minutos, ambos buzos se mueven de forma coordinada
hacia otros dos nuevos sitios de monitoreo. De esta manera se obtienen datos decensos instantáneos de dos minutos de duración. La reducción en el tiempo delos censos respecto a censos estacionarios realizados anteriormente (de 20 y 30
minutos de duración) se debe a que se busca evitar la sobreestimación, ya que se
reduce al mínimo la probabilidad de contar más de una vez a un mismo individuo
que entre y salga del área de monitoreo de forma repetida.

Barracuda pelicanos, Sphyraena idiastes(Imagen: M. Vera)

Censos con videocámaras
El estereovideo está formado por dos cámaras de video que graban en paralelo
y con una orientación determinada, de tal manera que a través de un software
específico es posible analizar las imágenes y obtener datos de presencia/
ausencia, abundancia, talla (con una precisión de 1 cm) y sexo de las especies
objetivo registradas. El sistema ha de calibrarse previamente a través del software
CAL (SeaGIS Ltd.). La ventaja de este sistema es que permite recorrer largas
distancias muestreando sin que el buzo se detenga a apuntar los registros (DOVS:
diver operated video system). También permite dejar el sistema de forma remota
con una carnada durante un tiempo determinado (BRUVS: baited remote video
system), evitando así el efecto de la presencia de buceadores, lo cual es muy útilpara especies de alta movilidad y asustadizas como los tiburones. Otra ventaja
notable es que permite hacer un censo de forma independiente del observador, ya
que los datos se toman en el análisis posterior del metraje, evitando el importantesesgo que se produce entre muestreadores y aportando un mayor rigor y fiabilidad
a los datos obtenidos (Harvey & Shortis, 1996; Watson et al., 2005).

Manta, Mobula sp.
(Imagen: R. Gallardo)

Tiburon Galápagos, Carcharhinus galapagensis(Imagen: R. Gallardo)

Edición por Stuart Banks 67

Jurel ojón, Caranx sexfasciatus(Imagen: A. Chiriboga)

Jurel de aleta azul, Caranx melampygus(Imagen: G. Edgar)• DOVS. El censo lo realiza una pareja de buzos. Uno lleva el sistema deestereovideo (figura 11-1), toma la hora inicial y final del censo y controla
su duración, mientras que el segundo buzo arrastra una boya con un GPS
atado a la misma. Se realizan censos de 2 minutos de duración nadando a
una velocidad y a una profundidad constante a lo largo del arrecife, a 1-1.5
m sobre el fondo, manteniendo las cámaras filmando hacia delante. El áreade muestreo, la identificación de especies, su abundancia, su talla (longitud
furcal) y su sexo se determinan en el procesado del metraje a través delsoftware EventMeasure (SeaGIS Ltd.). Una vez finalizado un censo, se
continúa nadando en la misma dirección y profundidad por 15 segundos
y se inicia otro censo. El GPS ha de estar sincronizado con el reloj de losbuzos, por lo que una vez fuera del agua se puede determinar la longitudde cada transecto realizado (añadiendo 5 m que corresponden al final deltransecto), obteniendo el área de muestreo y su geolocalización. En cadabuceo se realizan un mínimo de 8 - 10 transectos en cada sitio de estudio.
Se llevan a cabo en dos profundidades: 15 m y 30 m.
• BRUVS. El sistema de estereovideo se coloca sobre un marco lastrado y estableatado a un cabo y a una serie de boyas que marcarán su posición. Se puede
colocar sobre el fondo (BRUVS de fondo) y dejar a media agua a la deriva (BRUVS
pelágico). Se coloca frente a las cámaras una bolsa de malla metálica con un 1
kg de carnada (siempre de la misma especie) y se lanza sobre el sitio elegido,
registrando su localización y profundidad. Se deja por un lapso de 1 a 2 horas
con las cámaras grabando y se recoge. El área de muestreo, la identificación deespecies, su abundancia, su talla (longitud furcal) y su sexo se determinan en el
procesado del metraje a través del software EventMeasure (SeaGIS Ltd.).

Figura 11-1: Sistema de estereovideo (DOVS) llevado para censos de peces pelágicos.

Sistema de DOVS (Imagen: P. Salinas)

68 Manual de Monitoreo Submareal

Tortuga Chelonia mydas y coral negro Anthipates galapagensis (Imagen: R. Gallardo)

Caracterización yseguimiento del estado delos hábitats de la RMG
La Reserva Marina incluye dentro de sus límites casi cada tipo de hábitat costeromarino conocido, desde barrancos costeros expuestos bajo el sol ecuatorial hasta
las oscuras y misteriosas profundidades del plano abisal. Cuenta con camas demacroalgas densas, arrecifes coralinos sobre de una base de basalto y hábitats
poco comunes como chimeneas hidrotermales en la zona entre placas tectónicas.
Los hábitats marinos no representados son los de césped marino (sea grass) ybosques de algas laminares grandes, aunque sí existen extensiones de kelp en eloeste de las islas.
Uno de los retos para la conservación de la RMG es, dentro de sus límites,reconocer y definir bien las distintas variedades de hábitats para asegurar que
una proporción representativa de cada uno cuente con medidas adecuadasde protección (Banks 2007). Estas medidas apuntan a un futuro saludable
que asegura la longevidad de los servicios que la misma Reserva brindará a lacomunidad local (ej. el patrimonio natural, la seguridad alimenticia por la pesca
local, los ingresos por turismo de naturaleza, etc.). El nivel de conocimiento
sobre cada hábitat varía bastante por cuestiones de prioridad en investigaciones
previas y dificultad de acceso (figura 12-1).

Hábitats y su resiliencia

12
Hábitats diversos y conectados en la RMG
albergan configuraciones distintas de especies.

Tiburón martillo, Sphyrna lewini(Imagen: R. Gallardo)(Imagen: S. Banks)

Las comunidades marino-costeras que se asocian a una localización en concreto
están adaptadas para sobrevivir bajo un cierto rango de condiciones abióticas,
los cuales están principalmente influenciados por el régimen oceanográfico. Esto
influye en la penetración de luz que cambia con la profundidad, la disponibilidad denutrientes y define su ambiente productivo. La geomorfía, complejidad estructural,
tipo y heterogeneidad del sustrato; tiene mucho que ver con la formación delhábitat bentónico, así como con la pendiente y el nivel de exposición del sitio al
oleaje y a las corrientes.
Cama de Sargasos, Sargassum sp.
(Imagen: R. Gallardo)

Edición por Stuart Banks 69

Figura 12-1: Hábitats principales dela Reserva Marina de Galápagos y
sus extensiones estimadas(imagen - FCD/DPNG 2006).

70 Manual de Monitoreo Submareal

En muchos casos, los hábitats de mayor interés para la conservación suelen
estar caracterizados por las especies claves que colonizan el sustrato (como losarrecifes coralinos) y priorizados por su endemismo, sensibilidad y valor percibido
por el ser humano. Dichas comunidades normalmente crecen dentro de un rango
de condiciones físicas más reducidas que restringen sus distribuciones, lo cualfacilita su identificación y seguimiento.
Sin embargo es evidente que una sola categoría, como el arrecife rocoso que tiene
una amplia distribución (>80% de la zona costera), cuenta con mucha variabilidad
en sus ensamblajes de especies, siendo definidos por múltiples configuraciones
de su entorno oceanográfico, la geomorfía del lugar, interfaces entre ellos (ej. roca
y arena) y la biota asociada. Por tal razón, existe mucha heterogeneidad en el
hábitat rocoso submareal, entre las diferentes bio-regiones que se extienden entre
islas o incluso sobre escalas más finas de pocos kilómetros.
También reconocemos cambios en el estado de comunidades y sus hábitats
causados por eventos naturales y antropogénicos. Son sistemas dinámicos
sujetos a pertubaciones. Tales pertubaciones, ya sea El Niño, un invasión decangrejos nadadores, un derrame de petróleo o la sobrepesca, pueden redefinir
sus estructuras internas y sus extensiones en el espacio. Si estos eventos superan
la resistencia natural (alterando o eliminando los controles biológicos o físicos que
normalmente regulan una comunidad) esto puede desembocar en una cadena desucesos que cambien su configuración. Los niveles de diversidad y poblaciones
quedan alterados hasta que se llegue a un nuevo estado dinámico de equilibrio;
normalmente menos diverso.
Está demostrado que algunos hábitats con comunidades más desarrolladas y
diversas, con el tiempo son más resistentes o tienen una mayor resiliencia. Otras
configuraciones como los 'barrios de erizos' (urchin barrens) reflejan sistemas
degradados por perturbaciones crónicas y dominados por ciertas especies.
Algunos 'ingenieros de hábitat', sean peces o erizos, cambian el nicho ecológico,lo cual puede estorbar en los procesos de sucesión biológica necesarios para una
recuperación del hábitat a algo más diverso, o con un mayor valor en términos delos servicios que puede brindar.

Una alta proporcion de cobertura de tunicados
en algunos sitios de la RMG (6 - 15 m deprofundidad) estructura el hábitat bentónico.
(Imagen: D Ruiz)

El erizo blanco Tripneustes depressus es
conocido como el ingeniero de hábitats por
su influencia en la bioerosión y pastoreo de lasuperficie del arrecife. (Imagen: A. Chiriboga)

Algunos 'ingenieros de hábitat', sean peces o erizos, cambian el nicho ecológico, lo cual puede
estorbar en los procesos de sucesión biológica necesarios para una recuperación del hábitat.
Para caracterizar las extensiones de los hábitats costeros, a grandes rasgos se
han hecho transectos por la costa de todas las islas, lo cual, en años sucesivos,
se ha complementado con datos obtenidos de imágenes satelitales costeras demayor resolución. Para las aguas abiertas, ha sido posible empezar a modelarlos diferentes ambientes con base en la batimetría, las propiedades del agua,
las comunidades de plancton por su productividad, y datos satelitales y de loscruceros oceanográficos. Las aguas abiertas todavía requieren una buena línea
base biológica y con mayor número de datos de tendencias de extracción de pesca
de altura. Para sistemas bentónicos de profundidad mayor a 40 m, existe una
información muy limitada, recopilada de oportunidad en contados cruceros, en losque se han aprovechado tecnologías sumergibles y de filmación.
Para poder caracterizar mejor los hábitats de la zona costera –zona de la reserva
que representa el mayor grado de interacción con el ser humano– hay varias
técnicas de caracterización. Aquí describimos la metodología de mapeo dehábitat aplicada para una línea base del arrecife rocoso por toda la RMG, la cual se
combina con la búsqueda de especies poco comunes y/o amenazadas. La misma
metodología ha sido adaptada y aplicada a comunidades coralinas de la RMG,
descrita en la sección 14.

La zona del oeste de Galápagos y zonasde afloramiento se caracterizan por aguas
altamente productivas con fitoplancton yturbias con sucessiones de zooplancton.
(Imagen: S. Banks)

Megabalanus sp. representa un hábitat
altamente productivo y dinámico que sostiene amuchas especies en sitios someros expuestos acorrientes fuertes y oleaje. (Imagen: M. Vera)

Edición por Stuart Banks 71

Tabla 12-1: Escala semicuantitativa
de cobertura aplicada en el mapeo.

Escala% Cobertura
Rango

Descripción

00

Ausente1

Individuo

Un individuo solitario

2

0

-

2

Ocasional

3

2

-

25

Común

4

25

-

75

Abundante

5

75

-

100

Completo

El mapeo de hábitat en la zona submareal(2 m - 40 m de profundidad)
Se enfoca principalmente en el registro visual de información para la caracterizacióndel fondo marino durante inmersiones con buceo Scuba, considerando lacomplejidad del substrato, la batimetría, temperatura, composición de lascomunidades y la abundancia de organismos asociados como variables que
determinan las características de un hábitat. La información se registra combinando
varios métodos estandarizados para el monitoreo submareal de la RMG.
La unidad de muestreo principal es una banda de 2 m de ancho sobre la cual un
buzo avanza nadando lentamente estimando por intervalos de distancia lateral(por isobata) o profundidad (vertical) las proporciones relativas de cobertura por
cada una de las categorías de sustrato y epibiota (tabla 12-1), aplicando una escalasencilla y semicuantitativa (tabla 12-2).
Transectos paralelos a la línea de costa
Este método se utiliza para cuantificar la variabilidad del hábitat a una profundidad
constante. Para ello se colocan transectos referenciales, paralelos a la línea de lacosta que puedan cubrir longitudes de 100, 200 y 400 metros. Estos transectos
están colocados en profundidades estandarizadas (típicamente 15 m (45 pies) y 6
m (18 pies)) para mantener una correlación directa con la información recopilada
anteriormente durante los monitoreos de comunidades marinas en la RMG.
El inicio y final de los transectos debe ser marcado con GPS y se ayuda con la
colocación de una boya o señal visual en la superficie. También es posible que elbuzo remolque una boya superficial con un GPS en el interior (bien sellado), y asíevite la necesidad de colocar transectos.
En sitios de batimetría más somera, en los cuales no se encuentre o no sea posible
colocar el transecto a las profundidades estándar, se coloca a la profundidad
disponible y se registra la nueva profundidad del transecto.
Tabla 12-2: Las categorías aplicadas en el mapeo de hábitat submareal (ejemplo de un perfil vertical).

Negro

Solitario

Roja

Parda

Verde

Alga coralina

Tunicados

BalanoEsponja

Sargassum

Hidroide

Aspergopsis

Caulerpa

Significativo / meta

Gorgonia

Encrustante

HermatípicoAlga foliosa

Arena

Corales

Roca
Profundidad (pies)

Sustratos
expuestos120 - 110

2

4

0

2

0

0

3

0

0

4

2

0

0

0

0

0

0

110 - 100

2

3

0

2

0

0

3

0

0

4

2

0

1

0

0

0

0

30 - 20

2

0

0

2

0

0

2

3

2

4

4

0

3

3

0

3

0

20 - 10

2

0

0

2

0

0

2

4

3

4

3

0

2

4

0

3

0

intervalos

72 Manual de Monitoreo Submareal

Figura 12-2: Indicaciones para el mapeo de hábitat en una profundidad fija (aquí a 15 m) con intervalos de 10 m
y por perfiles verticales con intervalos de profundidad de 3 m.

Cada transecto se divide en secciones de 10 m. En cada sección se registranlos tipos de sustrato y los organismos sésiles bentónicos que coinciden con lalínea del transecto según las categorías y escala semicuantitativa (figura 12-2
y tabla 12-1).
Debido a que el área recorrida es más extensa, otro buzo acompañante puede
aprovechar la oportunidad para caracterizar los organismos marinos por gruposde interés, por ejemplo especies de interés comercial, especies indicadoras desalud del arrecife como Dermotalepsis o Arothon Sp., o invasoras. También esútil realizar un inventario acumulativo más extenso por cada grupo de especies(presencia) a lo largo del transecto. Dentro de las categorías existe una columna
para especies de interés particular según los proyectos en marcha.
Transectos perpendiculares a la línea de costa
Los transectos perpendiculares o verticales se utilizan para cuantificar los cambiosde hábitats en relación a la profundidad con observaciones y estimaciones visuales
a lo largo del transecto de referencia, que va desde una profundidad no mayor de
40 m hasta una profundidad más somera de 2 a 4 m. La profundidad para iniciar la
subida dependerá de las condiciones, la distancia a nadar entre las profundidades
y el nivel de experiencia de los integrantes del grupo.
Recuerde que los transectos deben terminar lo más cerca posible a la línea de lacosta, pero también es importante considerar algunas limitaciones que pueden ser
provocadas por la fuerza del oleaje y/o la complejidad del terreno.

Edición por Stuart Banks 73

Normalmente dos personas realizan réplicas de muestreo en dos bandas de 2 m deancho, a lado y lado de cada buzo, separados por 5 m. En cada inmersión se realiza
un nado lento perpendicular a la línea de costa desde la parte profunda hacia lasomera. Durante el acenso se estima la cobertura del sustrato por intervalos deprofundidad (típicamente 3 m o 10 pies) (figura 12-2).
Actualmente, una opción interesante es el uso de filmación en alta definición con
láseres montados que indican el ancho de la banda. Este requiere un análisis
posterior pero tiene la ventaja de simplificar el trabajo de buceo si las condiciones
son adversas. No se depende tanto de biólogos entrenados, y sobre todo queda unregistro objetivo para futuras comparaciones.
En algunos sitios, con una pendiente de más de 30 grados de inclinación, es posible
encargar a un buzo que coloque un transecto de 100 m en vertical como guía paralas personas que realizan el muestreo.
En tal caso, durante la subida se puede anotar la distancia recorrida en cadaintervalo de profundidad. Alternativamente, desde la panga en la superficie, sepuede mapear la batimetría con una sonda de mano y GPS (o con un equipo más
preciso si se dispone). Tomando una malla de puntos se pueden caracterizar bien
los sitios diagnósticos en tres dimensiones para un mejor análisis de cambios enel tiempo.
Registrando los datos
La información se registra en una hoja de campo, la cual está dividida en columnas
para cada tipo de hábitat. Para cada intervalo de profundidad o extensión lateral(en metros) se ingresa la escala de abundancia semicualitativa (tabla 12-2) paracada tipo de hábitat identificado, incluyendo '0' (ausente) donde aplica.
Otras consideraciones
Durante el monitoreo de hábitat es importante colectar o fotografiar las especies
que no han sido identificadas fácilmente durante el monitoreo, registrando laprofundidad a la que fue observada y las características específicas que permitansu identificación posterior.
Cama de sargasos, Sargassum sp. Cabo Douglas. (Imagen: S. Banks)

74 Manual de Monitoreo Submareal

Iguana Marina, Amblyrhynchus cristatus (Imagen: R. Gallardo)

Búsquedas dirigidas para
especies amenazadas y especies
potencialmente problemáticas
Entre las >3500 especies conocidas en la reserva marina, más de 600 de ellas
son endémicas de las islas, adaptadas dentro el archipiélago, o remanentes depoblaciones extintas del margen continental. Sostenidas por la asombrosa
confluencia de aguas frías ricas en nutrientes, estas especies viven en una región
ecuatorial tropical muy dinámica con diversas influencias moderadas por varias
corrientes en la unión de los dos remolinos oceánicos del Pacifico Este.
La RMG también cuenta con especies errantes de distribuciones más amplias enla cuenca del Pacifico. Muchas de ellas dependen de las islas, estas suelen ser unlugar de descanso en su camino migratorio, una zona de forrajeo y apareamiento,y el sitio principal de anidación en la región. Entre ellas hay especies consideradas
amenazadas a escala internacional por la pesca industrial o por la pérdida desus presas. La RMG y otras reservas del Pacifico figuran como zonas de alivio dedichas presiones.
La atención recibida por grupos de taxónomos para el diseño de medidas deprotección no ha sido uniforme en el tiempo. Por necesidad, esta atención secentró principalmente en los grupos de los cuales se tenían datos más extensos
sobre sus estados de población y en especies banderas por ser más visibles ode mayor interés para el público (ej. cetáceos, aves marinas, etc.). En el 2007, fue
posible reunir suficiente nueva información sobre las tendencias poblacionales en
otros grupos menos visibles pero de suma importancia para el funcionamiento delecosistema (Carpenter et al. 2008) como corales, algas y peces. Al ser incluidos en
los procesos de la Lista Roja de la IUCN, llamó la atención su importancia sobre su
capacidad de sostener, no solo a otras especies de prioridad para la conservación,sino también a comunidades enteras, en su rol como especies formadoras dehábitats.
La Lista Roja (Red List) de la UICN provee un marco lógico bastante contundente parala estimación del riesgo que tiene una especie, y depende de la formación de grupos
de expertos internacionales y locales para trabajar de manera sistemática en losgrupos taxonómicos. Para ello, la mayoría de la nueva información y evidencia paraestas evaluaciones de especies ha sido recopilada durante las salidas del campo.

13"Extinciones en los ecosistemas
son más probables a travésde aumentos en la magnitud yfrecuencia de los eventos climáticos
como El Niño que a través decambios graduales en el clima".
Edgar et al. 2009

Tortuga Carey, Eretmochelys imbricata.
(Imagen: R. Gallardo)

Cormorán no volador (Phalacrocorax harrisi).
(Imagen: S. Banks)

Edición por Stuart Banks 75

Figura 13-1: Ejemplos de tres especies
presumidas extintas luego del eventode El Niño en el 1982-1983. Azurina
eupalama (izquierda), la estrella
Heliaster solaris y alga intermareal
Bifurcia galapagensis (derecha).

Imágenes de izquierda a derecha: Heller & Snodgrass (dominio público, 1898); CC-FCD colecciones; G.Wellington (1974).

Sensibilidad entre clima y actividades humanas
Muchas especies adaptadas al afloramiento del oeste del archipiélago toleranun rango bastante estrecho de condiciones ambientales en los límites de sus
distribuciones naturales. Eventos naturales como El Niño, que aumenta latemperatura superficial y disminuye la extensión y provisión de aguas frías yproductivas, suelen tener múltiples efectos negativos sobre las poblaciones en
cuanto a cambios de comportamiento, reproducción, mortalidad de crías, etc.,
lo cual afecta su sobrevivencia como especies. Un ejemplo visible de ello es elpingüino de Galápagos, que tiene un rango de forrajeo bastante restringido cerca
de sus nidos en la costa y que depende de surgencias de agua para enfriar sus
cuevas de anidación. Sus poblaciones se redujeron a menos de 500 individuos
como consecuencia de los últimos eventos fuertes de El Niño 1982-1983, por la
caída de la productividad cerca de sus colonias y la desaparición de peces presa
como los de la familia Engraulidae, además de la presencia de ratas y gatos
introducidos que depredaron los nidos en la zona costera.
Otras especies de grupos pocos estudiados por estar escondidos bajo el agua
–como ascidias o esponjas– corren el riesgo de desaparecer antes de que
podamos siquiera reconocer las señales de alerta. El aumento de la temperaturadel mar y la pérdida de producción planctónica probablemente causó la extincióndel Azurina eupalama, o damisela punto negro, un pez costero bastante comúnque desapareció tras el evento de El Niño de 1982-1983. Este hecho demostró
que hasta especies comunes pueden extinguirse en meses y debió haber dejado
como legado una llamada de alerta parecida a la pérdida del Solitario Jorge. La
estrella del mar Heliaster solaris también desapareció de las islas junto con, almenos, dos especies de algas intermareales, lo cual cambio la dinámica de las
playas rocosas de las islas. Varios corales hermatípicos y solitarios redujeron su
abundancia y distribución drásticamente y persistieron solo por ciertas caletas
protegidas y paredes verticales en el Oeste de Isabela con extensiones menores a
200 m en la costa (figura 13-2).

Figura 13-2: Ejemplos de especies consideradas vulnerables por búsquedas dirigidas durante el monitoreo ecológico 2004-2014. R. wellingtoni no hasido registrado desde el 2003. De izquierda a derecha: Tubaestrea floreana, Rhizopsammia wellingtoni, Nodipectens magnificens y Eisenia galapagensis.

76 Manual de Monitoreo Submareal

Los arrecifes de coral hermatípicos también se vieron afectados por el
blanqueamiento como consecuencia de las altas temperaturas sostenidas y eldaño físico causado por oleaje excesivo. De las 22 especies registradas, ninguna
es endémica ni con amplia distribución en la región de Ecuador hasta México. Sin
embargo, tras la pérdida de >95% de los corales entre los dos eventos de El Niño
recientes, lo poco que sobrevivió en las islas norteñas ahora alberga a la mayor
proporción de biodiversidad de macrofauna del archipiélago asociada con las
provincias de Panamá y del Indo-Pacifico. Estas poblaciones enfrentan varias
amenazas, incluyendo una alta tasa de enfermedades entre sus poblaciones
reducidas (~20%) y daños por anclas arrastradas sobre sus colonias. Como
grupo, estos son los primeros impactados por los efectos de la acidificación delos océanos, lo cual impide el crecimiento normal de sus esqueletos de aragonito.
Debido a que no podemos controlar los efectos de gran escala como los eventos
climáticos naturales y ENOS, surge la pregunta de cómo podemos mejorar losprobabilidades de sobrevivencia de especies que existen naturalmente en el bordede la extinción y si deberíamos interferir o no. De hecho, las islas han contado conla dinámica de ENOS por miles de años y este forma parte de su ciclo natural.
Desde las años 60 existen pruebas de que ha habido poca recuperación deecosistemas tras los eventos fuertes ENOS (Edgar et al 2009) y que la falta derecuperación coincide con un aumento exponencial del uso de la reserva costera
por la pesca, además de otros índices de desarrollo como el tráfico marítimo, el
uso de sitios recreacionales y de visita, la contaminación en zonas portuarias yfondeaderos, y una mayor conectividad con la flota internacional y la implicaciónde especies invasoras marinas que esto supone.
La época de extracción de especies depredadoras de arrecifes fue más intensivo
desde los años 90 hasta el 2004, antes del nuevo Plan Capítulo Pesquero de 2006.
La remoción de peces como pargos o serranidos adultos y de más alto potencial
reproductivo y la langosta adulta ha tenido implicaciones sobre sus roles regulatorios
en el ecosistema. Normalmente cumplen un rol de control biológico de especiescomo erizos de mar o moluscos que son bioerosionadores. Ciertas especies presa
como el lapicero Eucidaris galapagenis o el gasterópodo Lithophagia pueden infiltrar
y romper el coral debilitado. Otras, como el Lytechinus semituberculatus, debilitan
las tallas de macroalgas o pastorean encima de los reclutas de coral y algas. Comenen abundancia –dejando roca desnuda– y descargan grandes cantidades de larvas,
las cuales se asientan e inician el ciclo en otro lugar. Experimentos in situ de largo
plazo por Witman et al. siguen averiguando con nuevos sistemas autónomos decaptura de video la importancia de estos vínculos tróficos.
Figura 13-3: Pocillopora Sp. blanqueado a lado de Pavona clavus (flecha amarilla) demuestra la diferencia de vulnerabilidad al estrés termal entre
especies de coral en el mismo arrecife (imagen J.Witman).

Edición por Stuart Banks 77

Figura 13-4: (A) Camas demacroalgas del kelp vulnerable,
Eisenia galapagensis, querepresentan un hábitat complejo
para muchas especies fueron
desplazadas con la llegada del erizoverde Lytechinus (B) en solo 5 meses
en el 2007 (Oeste de Fernandina).
Imagenes; S.Connell (arriba) y D.Ruiz(abajo).

Lo que ha resultado de un legado de observaciones, análisis y anécdotas de losprimeros colonos de las islas sugiere que hasta ahora no había un regreso al
estado considerado prístino, es decir, a un sistema no perturbado. Aún queda uninterrogante sobre si es ético, posible y práctico aplicar escenarios de restauración
correctivos en el ambiente marino (como manipulación de poblaciones de erizos)
sin causar mayor perturbación por las interacciones complejas, o si realmente es
mejor enfocarse en cómo mitigar las presiones, en la medida de lo posible, paraque un ecosistema encuentre un nuevo equilibrio natural.
Dada la incertidumbre de los impactos a gran escala causados por el cambio
climático global y sus efectos sobre ENOS, es urgente que sigamos estudiando elgrado de recuperación de zonas extractivas y santuarios y el rol de la biodiversidadde áreas conectadas por corrientes. La respuesta común durante los intervalos
entre eventos ENOS fuertes nos informará si el diseño del APM requiere una
modificación. Comparaciones entre regiones sugieren que la pérdida debiodiversidad en grupos submareales ha tenido impactos subestimados sobre el
funcionamiento ecosistémico (Mora et al. 2011).
Por esta razón es importante conocer dónde se encuentran las poblaciones
drásticamente reducidas y, como medida puntual, identificar y asegurar un uso
de la zona que no perjudique la sobrevivencia de las especies ni sus posibilidadespara una futura recuperación. Otras medidas más amplias como la zonificación
costera y el calendario pesquero apuntan a encontrar un balance práctico entre lasnecesidades de los usuarios de la RMG con base en una composición saludable
de los grupos funcionales en la comunidad submareal.

78 Manual de Monitoreo Submareal

Tabla 13-1: El registro de peces y macroinvertebrados móviles costeros poco comunes considerados amenazados según criteriode UICN Lista Roja (v2013.2).
Azurina eupalama (Damisela punta negra) En Peligro Critico (CR)
Esta especie se registró ocasionalmente en todo el archipiélago antes de 1983 – Floreana, Española (la bahía de Gardner), Isabela(Caleta Tagus), Marchena, Santiago (James Bay, Bahía de Sullivan), San Cristóbal (Wreck Bay), Santa Cruz (Bahía Academia, Plazas
Norte) y Santa Fe. Se ha registrado que esto mismo ocurrio alrededor de la Isla del Coco (Costa Rica) por Grove & Lavenberg (1997)
antes el 1983. Las cifras de la población se desplomaron durante el 1982/83 El Niño (Grove 1985) y no han habido avistamientos
nuevos desde entonces. Esta considerado como probablamente extincto.
Chriolepis tagus (Mystery goby) Deficiente en datos (DD)El registro único es de una sola muestra en 20-40 m de profundidad en Tagus Cove en 1934 (Grove & Lavenberg 1997). Se
desconoce su estado.
Heliaster solaris (Twenty-four-rayed sun star) No evaluado (NE)
Esta estrella de mar tiene una distribución muy restringida, solo ha sido registrada en Fernandina (Punta Espinoza) y sin ningún
avistamiento desde 1983 (Hickman 1998). Hickman (1998) considera que es endémica de Galápagos, mientras que Boone(1933) calificó a un espécimen colectado desde Punta Arenas, Costa Rica, como perteneciente a esta especie. Si Boone estáen lo correcto, entonces el estado crítico de peligro de extinción de esta especie no es compatible con la información actual, ysu categoría debe ser de "datos insuficientes" hasta que la densidad de población continental o los datos de tendencia estén
disponibles. Caída de la población desde 1982-1983: >99%.
Clypeaster elongatus (Elongate heart urchin) No evaluado (NE)El registro único es de una sola muestra a 5 m de profundidad en la Isla Seymour norte en 1934 (Clark 1948). Carece de un estudiode línea base apropiado (comunidades de fondos blandos).
Neorapana grandis (Great rocksnail) No evaluado (NE)
Hickman y Finet (1999) consideran a este molusco como relativamente común antes del fenómeno de El Niño de 1982-1983 ypoco común en la actualidad. Algunos juveniles han sido registrados en Bahía Academia, Santa Cruz, narcotizados por derrames
de diesel en años recientes. Caída estimada de la población desde 1982: >70%.
Nodipecten magnificus (Magnificent scallop) No evaluado (NE)
Antes de 1983 era avistado con frecuencia en Isabela, Fernandina y San Cristóbal (Wreck Bay). Los números disminuyeron
notablemente en febrero de 1983 durante El Niño con un 100% de mortalidad de animales, evaludado por Robinson (1985) en
marzo de 1983. Información anecdótica suministrada por pescadores indica que los animales fueron capturados para alimento
hasta 1992 aproximadamente, pero han ocurrido avistamientos ocasionales reportados desde 1995, incluyendo más animales
encontrados durante los censos cuantitativos de la ECCD hasta el 2014 y el reclutamiento en las trampas de pepinos de mar quesugiere cierta recuperación. Caída estimada desde 1982: > 90%
Hexapanopeus cartagoensis (Cartago crab) No evaluado (NE)
Este pequeño cangrejo fue recogido a una profundidad de entre 6 m y 33 m en Bahía Cartago (Isabela) en 1933, 1934 y 1938, pero
no se ha visto desde entonces (Garth 1939).

Poblacion restante del coral de copa, Tubastraea taguensis, Caleta Tagus, Isabela. (Imagen: A. Chiriboga)

Edición por Stuart Banks 79

Tabla 13-2: El registro de corales ahermatípicos sésiles considerados amenazados según criterio de UICN Lista Roja (v2013.2).
Rhizopsammia wellingtoni (Wellington's cup coral) En Peligro Critico (CR)
Antes del evento ENOS 1982-1983, Glynn y Wellington (1983) reportaron que R. wellingtoni fue más abundante (aproximadamente
13% de la cobertura superficial media) a 15 m de profundidad en Caleta Tagus, Isabela. Después del evento de El Niño de 19821983 la mayoría de colonias de Rhizopsammia wellingtoni fueron destruidas, a excepción de las colonias en Cousins y Rocas
Gordon (Hickman 2005). Humann (com. pers. a Hickman) observó y fotografió una colonia en Cousins y otra en Rocas Gordon en
1993; y en los años 90 tomó una fotografía de la colonia en las Rocas Gordon. Witman y Smith (2003) observaron R. wellingtoni
dentro de sus fotocuadrantes permanentes en Rocas Gordon en 1999 y en el 2000. Desde entonces, no se ha observado esta
especie en las Rocas Gordon, Cousins ni en cualquier otro lugar a pesar de recientes búsquedas específicas.
Tubastraea floreana (Floreana cup coral) En Peligro Critico (CR)
Antes de 1983, Tubastrea floreana era conocida en Caleta Iguana, Isabela; Bucanero, Santiago; Cousins cerca de Santiago; Pinzón;
Playa Prieta, Floreana y el islote Gardner cerca de Floreana (Wells 1983, Cairns 1991). Sin embargo, después de El Niño de 19821983, no se registraron T. floreana en ningun sitio hasta principios de los 90, cuando P. Humann observó y fotografió tres colonias
en Cousins, cerca de Santiago (P. Humann com. a C. P. Hickman). Según P. Humann (com. pers. a Hickman), estas colonias seobservaron anualmente hasta el 2001 pero no han visto desde entonces. A pesar de haber realizado búsquedas específicas en
todo el archipiélago, las únicas colonias encontradas durante la última década fueron observadas en el islote Gardner, cerca deFloreana en el 2004 (A. Chiriboga com. pers.).
Tubastraea taguensis (Tagus cup coral) No evaluado (NE)
T. tagusensis es una especie poco común en las islas Galápagos que ha disminuido considerablemente desde El Niño 1982-1983.
En la actualidad, este coral es conocido solo en un sitio de Playa Tortuga Negra, Isabela, donde están presentes grandes colonias(Hickman 2005). Sin embargo, T. tagusensis alguna vez fue considerada por Glynn y Wellington (1983) como el coral ahermatipico
más abundante en Caleta Tagus, Isabela, con una cobertura media que iba desde el 10% hasta casi el 30% de la cobertura total deepibenthos. Por otra parte, Tubastraea tagusensis solía ser común en Cousins, cerca de Santiago, (Glynn y Wellington 1983).
Polycyathus isabelae (Isabela cup coral) Vulnerable (VU)
P. isabela es una especie endémica poco comun (Hickman 2005) que solo ha sido registrada en tres sitios de la isla Isabela: Punta
Albemarle, Punta Vicente Roca y Caleta Iguana. El estado poblacional del type en Punta Albemarle es desconocido, aunque laespecie no ha sido avistada en búsquedas recientes en esa región. La población en Punta Vicente Roca, registrada en el 2003, nose ha visto después de ese año, a pesar de que este sitio ha sido encuestado estacionalmente desde el 2000 (Chiriboga, Hickmany Edgar, com. pers.), a excepción de una observación sin confirmar (M.Vera, pers. comm 2006). Además, otra pequeña colonia
fue avistada en el 2004 en Caleta Iguana, Isabela durante las búsquedas submarinas (Chiriboga, Hickman y Edgar com. pers.).

Tabla 13-3A: El registro de algas marinas consideradas amenazadas según criterio de UICN Lista Roja, (continúa en la tabla 13-3B).
Bifurcaria galapagensis (Galapagos stringweed) En Peligro Critico (CR)
Antes de 1983, esta alga fue altamente visible en las zonas submareales, intermareales y superficiales inferiores de San Cristóbal(Wreck Bay), Floreana (Punta Cormorán, playa negra), Pinzón, Rábida, Santa Cruz (frente a las Rocas Gordon, Caamaño, Bahía
Academia), Fernandina (Punta Espinosa), Isabela (Puerto Villamil, Caleta Tagus), Plazas, Seymour y Santa Fe. Cinelli & Colantoni(1974) reportaron B. galapagensis en 5 de 8 sitios muestreados entre 1971 y 1972; Mead et al (1972), en 5 de 29 sitios de buceo en1972. Wellington (1975) también hace hincapié en la abundancia de las especies alrededor de Santa Cruz y otras islas centrales
durante la década de 1970. Durante febrero de 1983, parecian poco saludables con adelgazamiento de los hapterios (estructurasde fijación de las algas) en los ejemplares estudiados por Robinson (1985), y la especie había desaparecido en marzo de 1983.
Desde 1984, fue avistado un solo parche pequeño (20 m x 10 m) y una muestra fue recogida en el oeste de Isabela en Caleta
Iguana en el 2001 con otro espécimen recogido en Fernandina (al sur de Cabo Douglas). Un posible avistamiento fue registrado
por Garske (2002) cerca de Las Cuevas en Floreana norte en el 2002. Caída estimada desde 1982: >99%
Desmarestia tropica (Tropical acidweed) En Peligro Critico (CR)
Grabado en tres ocasiones en enero de 1934 en la bahía de Post Office (Floreana) entre 14 m y 60 m de profundidad por Taylor(1945). Una colección fue reconfirmada en un crucero de investigación en enero del 2007 al oeste de Isabela.

80 Manual de Monitoreo Submareal

Tabla 13-3B: El registro de algas marinas consideradas amenazadas según criterio de UICN Lista Roja, (continuación de tabla 13-3A).
Eisenia galapagensis (Galapagos kelp) Vulnerable (VU)
Antes de 1983, el kelp se registró en Isabela (Caleta Iguana), Santa Cruz (Bahía Academia, Caamaño), Santa Fe, Marchena (NorthBay), Fernandina (Punta Espinosa) y Floreana (Post Office Bay, playa negra). Cinelli y Colantoni (1974) lo reportaron en 1 de 8
sitios muestreados entre 1971 y 1972; Mead et al (1972), en 4 de 29 sitios en 1972. Wellington (1975) observó que las algas
fueron especialmente abundantes en profundidad alrededor de Caleta Iguana (Isabela) durante sus estudios. Sin embargo, no
hubo ningún avistamiento confirmado hasta la recolección de una muestra en el 2004 y el posterior redescubrimiento de algas
profundas locales extensas durante un crucero de busqueda en enero del 2007 en Caleta Iguana, Isabela y Fernandina occidental.
Dictyota galapagensis (brown alga) En Peligro Critico (CR)Registrada en al menos seis sitios y considerada bastante común y abundante desde 1975 (Wellington) –particularmente en eloeste–, esta alga grande no ha sido registrada en estudios posteriores.
Spatoglossum schmittii (brown alga) En Peligro Critico (CR)Recogidas a través de al menos ocho sitios desde 1934 a 1978, esta alga endémica no ha sido registrada desde entonces. Está
en peligro crítico de extinción y hasta posiblemente extinta.
Gracilaria skottsbergii (red alga) En Peligro Critico (CR)
Solo se conoce de las colecciones originales de Taylor (1945) en 1934 a 15 m y 27 m de profundidad en Floreana (Post Office Bay).
Galaxaura barbata (red alga) En Peligro Critico (CR)Es endémica y conocida únicamente por las colecciones originales de Taylor (1945) en 1934 a 13 m y 18 m de profundidad en
Floreana (Post Office Bay) y Santa Cruz (Chiriboga, pers.comm), y una colección en 1963 (Dawson 1963).
Phycodrina elegans (red alga) En Peligro Critico (CR)Un alga endémica rara, conocida de siete colecciones antes de 1977.
Sargassum setifolium (String sargassum) En Peligro (EN)
Antes de 1983, fue encontrado en Fernandina (Punta Espinosa), Isabela (Caleta Black, Caleta Tagus), Floreana (Campeón), San
Cristóbal, Santiago, Santa Cruz y Bartolomé. Desde 1983, se ha registrado en el 2001 en Isabela (Las Marielas), flotando suelto en
Santa Cruz (Tortuga Bay). Caída estimada desde 1982: >90%
Dictyota major (brown alga) Deficiente de datos (DD)Un alga poco comun considerada endémica y registrada en 3 sitios del archipiélago central / sur oriental en muestras históricas
de draga, potencialmente redescubierta durante un crucero en el 2004.
Galaxaura intermedia (red alga) Deficiente en datos (DD)
Condicion desconocida.
Laurencia oppositoclada (red alga) En Peligro Critico (CR)
Solo se conoce de especímenes recolectados por Taylor (1945) en 1934 y Mead et al (1974) en Floreana (Playa Negra, Champion)e Isabela (Bahía Urvina, Punta Cristopher).
Myriogramme kylinii (red alga) En Peligro Critico (CR)
Solo se conoce de la ubicación original de la especie en Santa Cruz (Bahía Academia), donde fue recogida y descrita por Taylor(1945) en 1934.
Pseudolaingia hancockii (red alga) Vulnerable (VU)
Solo conoce de la ubicación original de la especie en Santa Cruz (Bahía Academia), donde fue recogida y descrita por Taylor (1945) en
1934.
Acrosorium papenfussii (red alga) Vulnerable (VU)
Alga endémica conocida solo de la colección de draga del type original muestreada en Bahia Academia, Santa Cruz (Taylor 1945).
Schizymenia ecuadoreana (red alga) En Peligro Criticio (CR)Alga endémica de aguas profundas, difícil para el ID, originalmente observada por Taylor (1934), común en Bahia Post Office,
Floreana; hoy considerada rara.

Edición por Stuart Banks 81

Figura 13-5: Ejemplos de especies presentes en la RMG y consideradas potencialmente problemáticas por sus impactos en otras regiones y su capacidad
para alterar la estructura de las comunidades marinas.

Taxonomia
Phylum:Chlorophyta
Familia:
Caulerpaceae
Phylum:Rhodophyta
Familia:
Bonnemaisoniaceae
Phylum:Arthropoda
Familia:
Gecarcinidae
Phylum:Bryozoa
Familia:
Bugulidae
Phylum:Cnidaria
Familia:
Pennariidae

Foto

Especies
Alga uva(Caulerpa
racemosa var.
occidentalis)

Plumero común(Aspargopsis
taxiformis)

Cangrejo azul
(Cardisoma
crassum)
Briozoo marrón(Bugulaneritina)
Hydroide(Pennaria
disticha)

Phylum:Acanthasteridae

Corona deespinasFamilia:
Pennariidae(Acanthasterplanci)

82 Manual de Monitoreo Submareal

EstadoFarlow la reporta en Isabela en 1899. Allan Hancock Exp.
reporta las variedades occidentalis y uvifera (aceptada
posteriormente como C. racemosa) en varias islas. Se
encuentra en bahías y lagunas de fondos arenosos en
varias partes del archipiélago con mayor densidad ensitios protegidos y someros. Su distribución nativa es elmediterráneo. Esta alga puede cubrir áreas extensas ydificulta el intercambio de oxígeno de los sedimentos e
impide que ciertas especies puedan alimentarse.
Registrada para Galápagos (ver ref.) en 1962, A.taxiformis
es una especie de aguas cálidas y tropicales, con un
rango de temperatura cuyo mínimo no baja de 15-16°C.
El primer registro lo hizo Dawson en Bahía Academia en
1962. Tiene una distribución amplia sobre todo en las
islas occidentales.
Según Hickman, es introducido. Ahora está incluido enel checklist de invertebrados introducidos en Galápagos(FCD-PNG 2013) . Sin embargo, en 1966 Bright cita esta
especie en Galápagos en una publicación sobre Costa
Rica. Finalmente Garth, en su trabajo sobre Brachyuros deGalápagos de 1991, lo cita como ausente en Galápagos.
De carácter invasivo no determinado, pero con distribución
amplia y críptica durante monitoreos entre el 2012 y 2014.
Primer registro para Galápagos en la década de los 30 por
las expediciones Allan Hancock. Actúa como fouler grave
y crece libremente con una distribución amplia en la RMG.

Primer registro para Galápagos en la década de los 30
por las expediciones Allan Hancock. Tiene una amplia
distribución en las islas.

Avistado en 1998 por Hickman en la Isla Darwin despuésdel evento de El Niño, con solo dos observaciones deindividuos en el 2004 y 2008 en el fondeadero. Esta
estrella coralivora grande ha causado gran pérdida dearreceifes en la Gran Barrera de Arrecife de Australia
a causa del blanqueamiento y la renovacion de sus
controles naturales (un caracol) por la sobrepesca.

Búsquedas dirigidas en el submareal
El monitoreo submareal siempre se presta para nuevas observaciones y tiene laventaja de volver a visitar sitios con el tiempo en la mayoría de las islas de la RMG
e identificar cualquier especie novedosa. Sin embargo, normalmente está limitado
a dos profundidades y a extensiones de 50 m de largo. Los buzos se concentran
en sus grupos de monitoreo y solo cuentan especies visibles –no crípticas–, sin
perturbar el suelo, las rocas, ni otras superficies.
Las búsquedas dirigidas pueden ser orientadas a un grupo taxonómico y deben
contar con expertos locales y/o externos que ayuden con la identificación. Se
realizan por una pareja de buzos en un periodo de 30 a 40 minutos y se trabaja
en una profundidad desde los 40-30 m, subiendo lentamente a 4-2 m mientras se
busca activamente entre las rocas.
Se debe llevar cámaras para documentar cualquier especie nueva o especies deinterés, y fundas para la colección de muestras, si es necesario, para registrar biencada observación. Si se encuentra algo muy específico (ej., un alga roja o una especie
de coral) se debe concentrar sobre el hábitat y el rango de profundidad donde hay
una mayor probabilidad de encontrar individuos o donde ha habido avistamientos
históricos en la literatura o por otros observadores. De tal modo, es posible combinarmodelos de preferencia de hábitat con registros históricos y reencontrar especies
vulnerables como el kelp Eisenia galapagensis (Graham et al. 2007).
Una lista de especies poco comunes que cumplen con criterios de especies
amenazadas de la UICN (o candidatos de grupos no evaluados todavía) y las
localizaciones donde encontraron ejemplares durante el último siglo está resumida
en las tablas 13-1, 13-2 y 13-3.

En el 2007, 45 especies marinas de Galápagos cumplieron con criterios de especies
amenazadas y fueron publicadas en la Lista Roja de la UICN.
En el 2007, 45 especies marinas de Galápagos cumplieron con criterios de especies
amenazadas y fueron publicadas en la Lista Roja de la UICN: 5 mamíferos, 6aves, 6 peces, 1 equinodermo, 7 corales, 6 algas pardas y 9 algas rojas (Edgar etal. 2009). En el 2013, se identificaron 6 especies potencialmente problemáticas(figura 13-5) de las que habría que hacer seguimiento y 18 especies de alto riesgocomo potencialmente invasoras (las cuales hasta ahora no han sido registradas
en la RMG). Las tendencias poblacionales de estas especies y los nuevos registrosconstan en una lista que la FCD y la DPNG actualizan cada año.

Pez Halcón de coral, Cirrhitichthys oxycephalus en arrecife rocoso (Imagen: R. Gallardo)

Edición por Stuart Banks 83

Coral hermatipico Porties lobata a 10 m, Bahía Tiburón, Wolf. (Imagen: A. Chiriboga)

14"Un tercio de los arrecifes de corales
enfrentan un elevado riesgo deextinción del cambio climático y los
impactos locales".
Carpenter et al.
Science 2008

Pocillopora Sp. (Imagen: M. Vera)

Mapeo y monitoreo
de arrecifes coralinos
La dramática reducción de los corales zooxantelados durante los eventos debioerosión y blanqueamiento desde El Niño 1982-1983 han resultado en una
amplia pérdida y fragmentación del hábitat de coral en el archipiélago. Los extensos
arrecifes coralinos se redujeron en un 97% después de 1983 y en un 26,2% (sobre
las colonias que restaban) durante El Niño de 1997-1998.
La lenta recuperación natural (unos 7-14 años en Darwin) de nuevas reclutas yla creciente preocupación sobre los riesgos potenciales para los corales por elcambio climático global, plantean importantes preguntas de conservación así
como su apropiada protección dentro de una reserva multiuso.
La comunidad más grande de corales remanentes en las islas Wolf, Darwin yMarchena (Punta Espejo) fueron evaluadas en el 2007 con la finalidad de proveer
información más actualizada de su condición en una línea base comprensiva, ycomo base para futuras evaluaciones de los efectos del cambio climático, del uso
humano, así como de la efectividad del manejo sobre estos últimos y persistentes
sistemas de arrecifes.

Buzos tomando medidas sobre los corales

A pesar de su limitada extensión, los pináculos norteños de Wolf y Darwin sostienen
un ensamblaje único de peces tropicales y de grandes pelágicos que se asocian
con las estructuras de coral hermatípicos, lo cual constituye 2/3 de la riqueza deespecies del Indo-Pacifico y las Panámicas de la RMG. Estos forman semillerospara muchas especies, son un refugio para juveniles y representan un mayor
atractivo para la oferta turística de buceo en las islas (figura 14-1).

Porites lobata (Imagen: M. Vera)

El programa de monitoreo adaptado del protocolo de AGRAA (Atlantic Gulf
Rapid Reef Assessment) se ha repetido anualmente por transectos lineares deintercepción y en complots fijos instalados en sitios de las islas Wolf y Darwin.
También ha habido monitoreos al norte de islas como Floreana y Española (Bahía
Gardner) las cuales suelen ser las más afectadas más por golpes de agua fría
durante episodios de La Niña. Finalmente, se hizo un levantamiento de información
sobre las grandes camas de colonias formadas por Porites lobata y Psammocora
stellata encontrados vivos y sueltos como escombros.

(Imagen: M. Vera)

84 Manual de Monitoreo Submareal

Esta información esta resumida en Banks et al. (2009). Se complementa con
trabajos pioneros y claves desde los años 70 llevados a cabo por los expertos: el
Dr. Peter Glynn; y en el caso de los corales fungidos (ubicados en pocos sitios deFloreana y Española) y corales ramificados, el Dr Joshua Feingold.

Figura 14-1: Reclutamiento depeces juveniles sobre Pavona sp.,
Isla Wolf, Bahía Tiburón a 12 m. Los
arrecifes de corales suelen ser sitios
particularmente productivos.

Dos técnicas de monitoreo
Aplicamos la metodología del monitoreo submareal, el mapeo de hábitat y las
mediciones oceanográficas (tabla 14-1) para complementar transectos dedicados
a corales a 15 m y 6 m de profundidad (descritos aquí).
Para el monitoreo de comunidades coralinas es recomendable establecer: (1)transectos lineares para caracterizar la estructura bentónica de la zona y recopilar
información sobre la salud de las colonias, (2) y parcelas permanentes que
permitan la replicación del monitoreo a través del tiempo sobre una sección de lamisma comunidad (tabla 14-2). Aunque el enfoque se centra en el estado de saludde los corales, también queremos conocer el estado de la comunidad de peces,algas e invertebrados asociados a ellos.
Normalmente se requiere de varias inmersiones con dos grupos de dos buzos que
trabajen simultáneamente. Es útil contar con dos buzos de respaldo, encargados
de colocar y retirar las cintas y señales visuales entre buceos. Se debe planificar
y adaptar el orden y los tiempos de las inmersiones con base en el avance deltrabajo del equipo.

Cardumen de peces juveniles sobre corales
Pavona clavus (Imagen: M. Vera)

Coral ramificado, Pocillopora sp.
(Imagen: A Chiriboga)

1. Transectos con puntos de intersección
Para la caracterización de una zona extensa hemos utilizado transectos de 50 m
a 400 m a lo largo de 15 m a 6 m de profundidad. Un equipo de dos buzos trabaja
registrando las medidas morfométricas y evalúando la condición de cada colonia
que se cruce en la cinta (ver detalles de muestreo a continuación). Normalmente,
por tratarse zonas de alta densidad con diversas especies, se trabaja en tramosde 10 m con intervalos de 10 m para tener una mayor representatividad a lo largodel transecto (tomando en cuenta el tiempo limitado para el buceo) y registrando
los puntos del inicio y fin con GPS (ver el mapeo de hábitat, sección 12), lo cual sepuede realizar al mismo tiempo.

Coral hermatipico, Pavona varians(Imagen: A Chiriboga)

Cuando se identifica una colonia que cruza la cinta, un buzo registra la posición
donde inicia y donde termina y procede a tomar las medidas de ancho y altura ylas observaciones de su condición (figura 14-2A).
Coral hermatipico, Pavona varians(Imagen: G. Edgar)

Figura 14-2: Buzos toman puntos deintersección para cada colonia que
evalúan. (B) Una parcela fija para elmonitoreo de corales con 3 tramosde 10 m en 3 secciones, todo en
una sola profundidad (normalmente
entre 15 m y 6 m).

Edición por Stuart Banks 85

Tabla 14-1: Tipos de muestreo aplicados al monitoreo de los comunidades de corales hermatípicos.
Tipo de muestreo

Objetivo

MétodoProcesamiento de datos

Transectos deintercepción
para corales (ensegmentos de 10
m con intervaloscada 10 m)

Caracterizar a lascolonias de corales
en términos decomposición de las
especies y las medidasmorfométricas.

Un buzo especialista en identificación decoral trabaja con un asistente con una
vara de medición para registrar el punto
centroide de cada colonia sobre la línea deltransecto, el diámetro máximo y la alturade coral desde el base de la colonia. Otros
datos de salud de los corales (blanqueo,
depredación, infección, etc.) son recogidospara cada colonia.

Abundancia de especies de corales
ordenados (rank) por la cobertura desuperficie promedio por Colonia / 100 ma lo largo de la isobata de 15 m y 6 m deprofundidad para cada área de estudio,
con el tamaño de la colonia promedio
por especie. Una estimación aproximadadel área de la colonia se calcula desde lasuperficie superior de una forma cónica
basada en el diámetro y la altura desdela base.

Mapeo de hábitaten escala fina
(sección 14)

Determinar las
proporciones relativas
de sustrato y especies
que forman hábitat
utilizando un método
estandarizado (aplicado
en todo el resto de la
RMG).

Se estima una franja continua de 2 m a lolargo del transecto. Cada 10 m (o menos)
en el lugar donde se observó una marcada
transición, se hace una estimación dela cubierta del fondo para los tipos desustrato, epífitas y epifauna utilizando una
escala semicuantitativa (0 – ausente; 1- individuo solitario; 2 - ocasional >0-2%;
3 – común 2-25%; 4 - abundante 25-75%;
5 – completo 75-100%)

Para representar las estimaciones
semicuantitativas, se calculan áreas desegmentos del transecto para cada clasede sustrato contra el rango mínimo ymáximo para la categoría de la escalagrabada y sumadas. Cada área máxima
y mínima para cada clase de sustrato fue
ajustada contra el área total muestreaday el valor del punto medio utilizado paralas clases de sustrato sobre el muestreodel transecto área. El error pocentual es
calculado a partir de las estimaciones
mínimas y máximas.

Censossubmareales
a nivel decomunidad(secciones 9-11)

Proporcionar elinventario de especies,
abundancia relativa yestructuras de tamaño
de población deespecies bentónicas
sésiles, especies demacroinvertebrados
móviles y peces dearrecife.

Toma de datos sobre la riqueza deespecies, abundancia y su estructura detamaño a lo largo de 50 m de un transecto.
Para peces, a lo largo de un corredor
de 5 m x 5 m; una franja de 1m2 para
macroinvertebrados móviles en intervalosde 5 m de largo; y porcentaje de coberturade especies sésiles usando 10 cuadrantes
de 0.25 m2 que contienen 81 puntos deintersección, separados cada 5 m.

Los datos de los censos comunitarios
están recopilados por la estación demuestro en los sitios replicados a 50
metros de distancia entre cada áreade estudio y resumidos por análisis
multivariado (MDS, etc.).

Muestreo
oceanográfico

Caracterizar lavariabilidad climática
como factor forzanteque afecta la dinámica
de los corales y su
salud, y determinarsu efecto sobre lacomposición de lacomunidad submareal.

Instalación de sensores submareales a
20 m y 10 m de profundidad dentro delos arrecifes de coral (generalmente seutilizan registradores de temperatura deOnset). Un instrumento oceanografico(SeaBird Electronics 19-Plus (v2) CTD-Fl)
se utiliza para perfiles de columna deagua en alta mar a 100 m de profundidadpara caracterizar temperatura, salinidad yclorofila-a. Uso de trampas de sedimento.

Los datos descargados estántransformados en series de tiempo,
de temperatura y de profundidad paralos perfiles verticales de temperatura,salinidad y clorofila-a (productividad
inferido de fluorescencia) para correlación
con los datos biológicos.

2, Parcelas fijas (fixed plots)
Desde el 2007 hubo un esfuerzo dedicado a mejorar la línea base de corales con lacaracterización de Wolf, Darwin y Marchena (Punta Espejo) donde se establecieron
cuatro puntos con complots fijos en los sitos de Tres Cuevitas en Floreana, Wolf
Corales (Bahía Tiburón), y Darwin Fondeadero Norte. Aquellas parcelas están en
zonas donde el turismo no está permitido para no obstruir la actividad y forman
parte de los sitios diagnósticos establecidos en el 2004 para el monitoreo decomunidades submareales de largo plazo. Información de peces y especiessésiles que incluyen algas está recopilada y complementa el monitoreo de corales
descrito aquí.

Coral ramificado, Pocillopora damicornis(Imagen: A Chiriboga)

86 Manual de Monitoreo Submareal

Los complots fijos deben estar marcados con varillas de hierro cada 5 m y con
amarres plásticos numerados para indicar el rumbo del transecto. La cinta colocada
por cada barra asegura un eje central y referencial para la parcela. Las varillas dehierro están instaladas de manera perpendicular a 2 m de cada lado, desde el inicio
hasta el final, para establecer un cuadrante de muestreo de 50 m x 4 m.

Tabla 14-2: Consideraciones para el uso de complots fijos y transectos al azar.
Sitios permanentes (fijos)

Sitios no permanentes

Tiempo necesario para establecer,
marcar y mantener los sitios
permanentes y saber cómo encontrarlos
sin perder tiempo de buceo.

Una vez establecida la zona de muestreo,
se puede repetir el monitoreo con relativa
facilidad, al azar.

Se puede profundizar en la toma dedatos sobre el perfil físico y otros
aspectos en el sitio entre visitas
para entender mejor procesos ycomportamientos funcionales.

Mejor representación del área si hay mucha
heterogeneidad en el espacio.

La interpretación de datos no cuenta con
tanta variabilidad espacial.

No se pueden revisitar efectos al nivel decolonias especificas con facilidad.

Si no se realiza correctamente este tipo
de monitoreo con sitios permanentes, noes mejor que con sitios al azar.

Requiere una replicación estadísticamente
adecuada.

Facilita el uso de fotocuadrantes
comparativos y seguimiento de colonias
marcadas través del tiempo.

Mejor representatividad sobre un área más
amplia.

Cada pareja de buzos trabaja como en los transectos largos, marcando el inicio yel final de cada cinta en tramos de 10 m en cada uno de los 3 transectos de 50 m
en paralelo (figura 16-2B). Cada tramo está registrado por su posición en la cinta
métrica y por su orientación (ej. 0-10 m, 20-30 m, 40-50 m x lado costero, mitad oaguas abiertas).

La toma de datos sobre las comunidades coralinas
Para el monitoreo de comunidades coralinas es importante que el buzo o losequipos de monitoreo estén familiarizados con la metodología de muestreo y con
los aspecto básicos de la biología y taxonomía de los corales (ej. tamaño, forma e
identificación de género, en lo posible, a nivel de especies).
Estos conocimientos permiten que el buzo (o equipo de monitoreo) esté capacitado
para delimitar bordes de la colonias y tomar medidas sistemáticas y comparables
entre buzos.

Coral Hermatipico, Gardineroseris planulata(Imagen: J. C. Moncayo)

Una buena ayuda es el libro 'Corals and other radiates of Galapagos' de Cleve
Hickman (2008) y otra guía de especies de campo mantenidos por la FCD-Biomar.
Para delimitar los bordes es importante conocer qué constituye una colonia. Se
deben averiguar su forma de crecimiento y los aspectos externos de la misma.
En la mayoría de los casos, delimitar los bordes de una colonia puede ser fácil
debido a la variabilidad externa de la forma y el tamaño de cada especie de coral,
pero cuando se trata de dos colonias de la misma especie, la delimitación de lascolonias puede tomar varios minutos aun cuando se está familiarizado con este
procedimiento.
En consecuencia, el tiempo para el monitoreo puede variar bastante según lacomposición de las colonias. En general, 30 m de monitoreo (3 secciones de 10 m
de largo en 50 m de longitud total) requiere de por lo menos 30 minutos en cadaprofundidad por cada pareja de buzos.

Coral hermatipico, Porites lobata(Imagen: J. C. Moncayo)

Edición por Stuart Banks 87

Figura 14-3: Estimación delporcentaje de mortalidad en lasuperficie de un coral.

Lineamientos para establecer
límites de una colonia
Una colonia es considerada autónoma cuando presenta un esqueleto o estructura
individual. Se identifica basándose en la presencia de tejido vivo que define losbordes de la colonia y la presencia de coralitos claramente identificables.
1. El monitoreo y la evaluación de la colonia se deben realizar únicamente concolonias que aún se encuentran adheridas al sustrato. Las colonias rotassolo se evalúan si se encuentran nuevamente adheridas al sustrato o son
fragmentos grandes que permanecerán en la misma posición a pesar de la
influencia de las corrientes.
2. Se incluyen colonias que están 100% muertas solo si es posible identificar elgénero por la morfología de la colonia (ej. Porites lobata) o por la característicaque presentan los coralitos (ej. Pavona varians).
3. Para identificar los bordes de la colonia es importante localizar la conexión o elesqueleto común, las conexiones de los tejidos vivos, la medida de los pólipos
y el color de los mismos.
4. Se debe observar bien la colonia evaluada. Una colonia de P. clavus puede
encerrar a otra de P. gigantea en el medio y aparentar ser una sola colonia a
simple vista.
5. Si existen colonias que crecen sobre otras, se debe evaluar individualmentecada colonia.
6. Si la colonia está muerta parcialmente, es importante incluir la sección muerta
de la colonia cuando se establezcan sus bordes.

Identificación del coral
Coral hermatipico Porties lobata(Imagen: A Chiriboga)

Una vez que se han establecido los bordes de la colonia, es más fácil hacer
una correcta identificación del género y de la especie del individuo evaluado,
teniendo especial cuidado en la identificación del género ramificado Pocillopora.
Para distinguir entre colonias de este género es recomendable basarse en las
características de la colonia (forma, ancho, largo de las ramas, forma y talla delas verrugas, etc.), dando especial atención a la identificación de corales con
apariencia similar.
Es importante que los observadores tengan buena experiencia y que seancompetentes en la identificación de las diferentes especies de coral antes de llevara cabo la evaluación.

88 Manual de Monitoreo Submareal

Mediciones sobre la colonia
Después de la identificación de la colonia y de sus bordes, es importante evaluar
la forma de crecimiento de la misma. Esto nos permitirá asegurar que las medidas
que se toman están en el mismo eje de crecimiento en cada visita.
Se mide con ayuda de un segmento de 1 m de tubo de PVC, con marcas en
centímetros, el diámetro máximo proyectado en forma perpendicular, considerando
el ángulo de crecimiento desde los bordes de la colonia hasta el tubo de PVC, que
el observador coloca sobre la colonia sin tocarla. En la medición se incluyen tantolas áreas vivas como muertas de la colonia (figura 14-3).

Figura 14-4: Mediciones típicas sobre
una colonia masiva de coral. Medida deldiámetro entre los puntos más alejados dela colonia y altura desde la cima hasta labase. Para corales incrustantes este puede
ser no más de 0.5 cm o hasta 7-8 m en lascolonias más grandes.

Figura 14-5: Ejemplos de blanqueamiento
de los corales por choques extremos deagua cálida durante eventos fuertes de El
Niño y por choques de agua fría durante
eventos de La Niña.
(Imágenes: M.Vera y D.Ruiz)

Edición por Stuart Banks 89

Para medir la altura de la colonia también se usa el tubo de PVC, pero para ello es
importante colocar el tubo de forma paralela al eje de crecimiento de la colonia,
especialmente para los corales que crecen en ángulo respecto del fondo marinoo en una superficie inclinada. La altura se mide desde el sustrato de la base de lacolonia y no desde el sustrato del arrecife o fondo marino (figura 14-4).
Para una colonia que crece en la cima de otra, solo se debe medir el diámetro y laaltura de la colonia que está siendo evaluada.
Para una colonia que ha sido quebrada y que es demasiado grande para moverlao que ha vuelto a sujetarse al sustrato y que aún no presenta una redirección ensu crecimiento, se debe medir la colonia desde su eje original de crecimiento; pero
si la colonia ha empezado a crecer en una nueva dirección, hay que asegurarse
de medir el diámetro y la altura tomando como base el nuevo eje de crecimiento.
La diferencia más común que generalmente se encuentra entre los observadores
es la estimación del porcentaje de mortalidad. Para minimizar el prejuicio serecomienda seguir las siguientes reglas:
1. Cuantificar el total de la mortalidad por estimación visual desde arriba como si
fuese un mapa e ignorar todo el tejido presente a los lados, debajo o encima dela superficie del coral
2. El plan de observación es evaluado desde un ángulo paralelo al eje decrecimiento.
3. Estimaciones de mortalidad para todos los corales ramificados (PocilloporaSp.), que generalmente están muertos desde la base de las ramas, deberían
estar limitadas como parte periférica de la colonia.
4. La metodología AGRRA hace una observación adicional de mortalidad parcial
que incluye ambas mortalidades: reciente y antigua. La mortalidad recienteestá definida como cualquier parte viva en la cual la estructura de los coralitos
es blanca y aún permanece intacta o está cubierta por una fina capa desedimento. Por el contrario, la mortalidad antigua está definida como cualquierparte del coral que no está viva en la cual la estructura no es visible o estácubierta por organismos que no son fácilmente removibles (ej. ciertas algas einvertebrados).
5. Corales que han sobrecrecido por esponjas incrustantes como la Cliona, pero
cuya estructura de coralito aún puede ser identificada bajo la esponja, deben serconsiderados de mortalidad antigua (esto se puede distinguir en Porites lobata).

Figura 14-6: Guía visual de lascondiciones registradas, posiblemente
presente en corales de Galápagos:*DTTS-Síndrome de adelgazamientodel tejido decolorado,*TRM-Trematodiasis, Por.UDEnfermedad no caracterizada(posiblemente *PR-Respuesta dePigmentación), GA-Crecimiento
anormal (en Pocilopora-Poc, PavonaPav o Porites-Por),*WB-Banda blanca, *WRBS-Banda,
anillo o mancha blanca.
(según Vera & Banks 2008).
* Algunas de las condiciones encontradas
han sido vinculadas con algunas de lasya identificadas en otras localidades delPacifico Oriental Tropical pero no están
confirmadas para Galápagos.

90 Manual de Monitoreo Submareal

Condición del Coral
El blanqueamiento representa uno de los síntomas más obvios de estrés en loscorales y está causado por la expulsión de algas zooxantelas simbióticas de lospólipos del coral, normalmente por estar sujetos a temperaturas sostenidas altas obajas. Una vez que las zooxantelas están en la columna de agua, pueden mantenerse
en su estado planctónico y reintegrarse en los corales. Las zooxantelas se asocian
por afinidad con ciertos géneros de corales. Sin embargo, si quedan expuestos en lacolumna de agua por más de dos semanas, debido a falta de sustento proporcionado
por su simbionte, el coral suele deteriorarse y finalmente, morir.
En algunos casos, los corales pueden presentarse pálidos o parcialmente
blanqueados (o con blanqueamiento remanente) debido a los efectos típicamenteasociados con el coral debilitado (ej. sobrecrecimiento de algas, depredación,
enfermedades, etc.) y estar aún en proceso de recuperación. Cuando apenas seestá blanqueado, el esqueleto parece casi luminoso bajo el agua (figura 14-5). En
algunas ocasiones un género puede blanquearse totalmente, mientras que otros
géneros y especies con mayor resistencia al calor o al frio se mantienen en una
buena condición.

Coral hermatipico, Leptoseris scabra(Imagen:A. Chiriboga)

También es muy importante diferenciar entre un coral con mordidas de peces,
tejido recobrándose de mordidas de peces y un tejido blanqueado.
Una condición que solo se ha registrado en el coral Porites lobata son lesiones
que se caracterizan por manchas de color rosa brillante y tejido decolorado.
Estas lesiones ocurren a menudo en formas y patrones irregulares dispersos enla superficie o márgenes de la colonia, y se presentan como respuesta a perdidade tejido por mordidas de peces, sobre-crecimiento de algas y otros factores nodeterminados. Esta lesión que podría estar relacionada a una condición conocida
como Respuesta de Pigmentación-PR, condición no confirmada para Galápagos.
Determinar la causa o causas potenciales de enfermedades es a veces muy
difícil, sobre todo para estandarizar las evaluaciones de las colonias, por lomenos hasta que haya un consenso más común entre expertos en nomenclaturade enfermedades. Vera y Banks (2009) presentan ejemplos de las condiciones
encontradas durante el 2006-2008 ya caracterizadas como base de referencia(figura 14-6). Es importante seguir documentado anomalías de las condiciones detejido y fotografiar las colonias afectadas teniendo cuidado de no tocar demasiado
la colonia con el riesgo de que propague una enfermedad a otras colonias.

Coral ramificado, Pocillopora eydouxi(Imagen: J. C. Moncayo)

Cangrejo Trapezia ferruginea en coral ramificado Pocillopora sp. (Imagen: G. Edgar)

Edición por Stuart Banks 91

Manejo de datos de corales
Debe documentarse correctamente la metadata de cada sitio (buzo, temperatura,hora, oleaje, etc.). Los datos que se toman sobre cada colonia que cruza lostransectos de intercepción y en parcelas fijas son:
1. Especies de cada colonia.
2. Ubicación: puntos de intersección con la cinta métrica para cada colonia.
3. Tamaño de la colonia: diámetro máximo y altura máxima.
4. Mortalidad reciente: porcentaje afectado de la colonia.
5. Mortalidad antigua: porcentaje afectado de la colonia.
6. Palidez: decoloración del tejido, porcentaje afectado de la colonia.
7. Daño mecánico: causado principalmente por el anclaje de barcos.
8. Enfermedad: determinar si la colonia se encuentra enferma o no.
9. Blanqueamiento: porcentaje afectado de la colonia.
10 Sedimentación: anotar si la colonia está cubierta de sedimentos.
11. Crecimiento de algas: determinar si existe sobrecrecimiento de algas y de quétipo, tratando de determinar, por lo menos, el grupo funcional.
12. Predadores: registrar la presencia de organismos predadores como la estrella
corona de espinas.
13. Presencia de bioerosionadores (poliquetos, moluscos, erizos de mar, etc.).
14. Presencia de peces territoriales / crípticos y otros macroinvertebrados.
15. Observaciones adicionales.
Todos los tipos de recolección de datos tienen un formulario establecido para lahoja del campo (figura 14-7) y desde el 2007 están ingresados con un formato
estandarizado de Excel.

Figura 14-7: Ejemplo de una hoja dedatos tomado por una pareja de buzos
que realiza mediciones de corales por
transectos de intersección.

92 Manual de Monitoreo Submareal

Arco de Darwin (Imagen: W. Sweet)

Muestreo
oceanográfico
El océano, por sus propiedades de absorción y captación del calor y del carbono
atmosférico, actúa como regulador climático global y posee la capacidad demodificar climas costeros. Las islas oceánicas, como el archipiélago de Galápagos,
se encuentran particularmente bajo esta influencia marina, que interactúa con lageología del sitio generando características únicas en el clima y la biodiversidad.
En la Reserva Marina de Galápagos, la convergencia de cuatro corrientes oceánicas
posiciona a las islas del archipiélago bajo distintos regímenes oceánicos: una zonacombinada en las islas del centro-sur; una zona cálida en las islas del norte; y una
zona fría al oeste de las islas Isabela y Fernandina, donde se encuentra la mayorárea de afloramiento de la subcorriente ecuatorial. Esta subcorriente también“alimenta” el resto del archipiélago mediante una serie de ramales y bolsillos
de afloramientos en las costas de otras islas como Santa Cruz, San Cristóbal,Santiago y Floreana (Schaeffer et al., 2008), definiendo hábitats contrastantes, conuna producción primaria abundante aunque efímera y, en consecuencia, de altavariabilidad espacial y temporal en el sistema bioquímico.
A pesar de la reconocida importancia de la investigación oceánica para Galápagos,
el interés de los estudios holísticos sobre la física y química marina ha sido
fluctuante, movido en gran parte por impactos puntuales como eventos de El Niño
fuertes (1982-1983 y 1997-1998) y en años recientes por las alertas de tsunami.
En el primer caso, por su ubicación en la zona de generación de El Niño - Oscilacióndel Sur (ENOS), la RMG se ha visto favorecida por los esfuerzos de investigacióninternacionales en el Océano Pacífico Ecuatorial, los cuales han permitido
comprender a grandes rasgos la dinámica oceánica que domina sus aguas. Sin
embargo, además de las caracterizaciones físico-químicas de la zona ecuatorial(Wyrtki 1981, 1985a, 1985b, Yu and McPhaden 1999, Kessler 2006) y de reportes
técnicos del Instituto Oceanográfico de la Armada del Ecuador (INOCAR), pocas
investigaciones de carácter científico se han enfocado a fondo en la oceanografía
de Galápagos (Houvenaghel 1978, 1984, Steger et al. 1998, Sweet et al. 2007), porlo que se carece de información sobre la dinámica a fina escala.

15

Instrumento Conductividad - Temperatura Profundidad (CTD, por sus siglas en ingles) con
jaula de protección para perfiles verticales e
instalaciones fijos. (Imagen: B.Schaeffer)

En gran parte, debido a la tradición ecológica de la investigación en Galápagos,
las instituciones locales con presencia histórica en las islas, como la Dirección delParque Nacional Galápagos (DPNG) y la Fundación Charles Darwin (FCD), se han
Edición por Stuart Banks 93

concentrado en el monitoreo de especies marinas icónicas o de interés comercial
y, durante la última década, en la caracterización de hábitats e interacciones entre
poblaciones bióticas marinas (Tapia et al. 2009).
Estos estudios han generado un invaluable respaldo de información que permite
identificar áreas prioritarias en donde la interacción de la biota marina y lascondiciones oceánicas físicas y geoquímicas requieren ser estudiadas en detalle;áreas donde los intereses de investigación, conservación y actividades humanas
se conjugan intrínsecamente. Hasta hace pocos años, los centros de investigación
nacionales como el Instituto Nacional de Oceanografía de la Armada (INOCAR) yel Instituto Nacional de Pesca (INP) se habían mantenido alejados de la realidad
insular debido a su ausencia física del archipiélago, y a nudos críticos en el flujo
de información entre actores de la ciencia y de conservación en las islas. Esto
generó una desconexión entre los recursos de investigación disponibles en
Galápagos y las iniciativas lideradas por dichas instituciones, repercutiendo en la
subutilización de recursos técnicos y en los resultados. Con la apertura del Centro
de Investigaciones Marinas de Galápagos en el 2006 – adjunto a INOCAR – nació
la oportunidad de vincular la experiencia de investigación biológica y ecológica
de las instituciones locales con las capacidades técnicas en las áreas de física,
química y geología de esta institución. En este contexto, este capítulo contiene unrecuento de la información oceanográfica actualmente disponible en la RMG, delos métodos e instrumentación utilizados, y recomendaciones para la continuidad
y expansión de la red mínima de observaciones oceanográficas.

Galápagos y la red regional deobservación de los océanos
La era satelital de observación del océano se ha traducido en un renovado impulso
hacia la oceanografía, permitiendo contemplar la escala real de los fenómenos deinterés y resaltando la necesidad de iniciativas de investigación a escala regional
y global. Los satélites o sensores remotos han recabado amplia información
histórica sobre las condiciones oceánicas en Galápagos y en otras áreas del Pacífico
mediante variables como la temperatura superficial del mar, la clorofila superficial, laelevación del mar y los vientos. Sin embargo, el uso más eficiente de esta tecnología
requiere de mediciones in situ complementarias, para validar y afinar la informacióna pequeña escala. La información in situ, además, ayuda a comprender los procesos
que ocurren dentro de la columna de agua, los cuales se encuentran fuera del rango
visual de los sensores remotos. En este contexto, y dado el gran interés internacional
centrado en el Pacífico Ecuatorial como zona de generación de ENOS, a mediados delos años 80 nació el arreglo de boyas oceanográficas y meteorológicas TAO – TRITON,
que se extiende entre 135°E - 95°O y 10°N - 10°S (figura 15-1). En conjunto con la
información satelital del área, el arreglo TAO - TRITON contribuye al pronóstico deFigura 15-1: Localización delarreglo instrumental oceanográficoTAO - TRITON (fuente: http://www.
pmel.noaa.gov/tao), y delimitación
aproximada de regiones de análisis
de El Niño.

94 Manual de Monitoreo Submareal

ENOS con información sobre la profundidad de la termoclina, corrientes superficiales
y sub-superficiales. Los índices y pronósticos resultantes son difundidos a escalainternacional por la Agencia Nacional de Océanos y Atmósfera de EE.UU (NOAA),
tomando como principal referencia el área del Pacífico Central, conocida como lasregiones El Niño 3 y El Niño 3.4.
Dichos índices y pronósticos son utilizados por la mayoría de países de la costadel Pacífico Oriental, incluyendo Ecuador. Sin embargo, la resolución, precisión ydisponibilidad a tiempo real de estos datos oceánicos pueden no traducir fielmente
todas las particularidades del sistema oceánico a escala local, entre otras cosas,
porque el área de la Reserva Marina de Galápagos se encuentra directamente
al margen tanto de la zona de interés para la elaboración de los índices, comodel arreglo instrumental in situ. Esto puede limitar la capacidad de encontrar
correlaciones claras entre los patrones climáticos y el comportamiento de labiota y, por ello, la recolección de datos in situ en el archipiélago es imprescindible
para esclarecer la imagen de su ambiente marino y potencialmente generar
conocimiento predictivo que permita cumplir con los objetivos de conservación ymanejo ambiental de Galápagos.
Por otra parte, la posición de la RMG en la convergencia de las corrientes oceánicas
responsables de la variabilidad estacional en el Ecuador y en otros países delPacífico Sur-Oriental, y en el tránsito de ondas internas concernientes a ENOS,
la convierten en una plataforma estratégica para el monitoreo de la variabilidad ytendencias climáticas (figura 15-2). Consolidar a Galápagos como un sistema deobservación oceánica ayudaría a responder a la creciente demanda de información
climática para dar respuesta a preocupaciones sociales en temas de gestiónde riesgo como el cambio climático, tsunamis, lluvias y aguajes. Para ello es
necesario transformar las actuales plataformas de toma de datos en elementos deun sistema más amplio y sostenido que respalde directamente las necesidades deinvestigación nacionales y regionales, y se expanda hacia aplicaciones de interéspúblico. Ejemplos internacionales demuestran que es posible una transición exitosa
desde la investigación hacia un desarrollo formal de operaciones continuas (Hallet al., 2010). Para su sostenibilidad, los proyectos y programas requieren tener un
carácter adaptativo que les permita enfrentar retos institucionales, económicos ypolíticos en el largo plazo. Se debe reconocer, además, que la comunidad científica
y sus bases de financiamiento no pueden cumplir con estos objetivos por sísolos, y por lo tanto se requiere de recursos adicionales significativos por partede los gobiernos nacionales potencialmente beneficiados y de organizaciones
intergubernamentales (OceanObs'09, Declaración de Venecia 2009).

Figura 15-2: Series de tiempo de losíndices de Oscilación Decadal del Pacífico(PDO); El Niño - Oscilación del Sur (ONI);y anomalías de temperatura superficialdel mar en la estación meteorológica de laECCD, Isla Santa Cruz FCD.

Edición por Stuart Banks 95

Uno de los mayores retos es comprender la naturaleza interdisciplinaria deun sistema de observación, puesto que el océano es un conjunto complejo yaltamente conectado en todas las escalas y disciplinas científicas. En general,los sistemas de observación independientes han evolucionado para cubrir lasnecesidades de disciplinas y usuarios finales específicos. Internacionalmente,la observación se ha concentrado en la física oceánica y atmosférica, mientras
que en Galápagos la biología y la ecología son ciencias tradicionales y el foco deatención de los programas de conservación. Los resultados de dichos programas
deben consolidarse como la base para describir e identificar las áreas y procesos
oceánicos prioritarios para los ecosistemas de la RMG. A diferencia de otros lugares,
los objetivos en Galápagos deben dirigirse a coordinar la integración del monitoreo
de variables ambientales físicas, químicas y geológicas, de modo que se asegure
la continuidad histórica de los datos y se posibilite la comprensión de la dinámica
local y el sistema regional en conjunto. Dos objetivos específicos claves de una
base de observaciones oceánicas integradas son el desarrollo de índices ENOS
locales y la determinación de umbrales de riesgo que causen perturbaciones en el
ecosistema. Además, el sistema de observación debe construirse sobre principios
de libre intercambio de datos y productos de información, trabajo multidisciplinario
e interinstitucional, y difusión de resultados a la comunidad científica y a losusuarios. Finalmente, es necesaria la implementación de mecanismos robustos
para recibir y aplicar retroalimentación por parte de los usuarios de la información,
así como el desarrollo de productos de educación formal para asegurar que tantolos científicos oceanográficos como de otras disciplinas tengan una comprensión
más amplia de las complejas interacciones del océano con otras ramas de laciencia y de su gran influencia en asuntos de importancia social. Algunos principios
importantes del sistema serán el libre intercambio de datos y productos deinformación, un enfoque en índices ENOS locales (no solo regionales) y los rangos
límites que causan perturbaciones, y el desarrollo de mecanismos robustos para
recibir y aplicar la retroalimentación de de los usuarios.

Variables oceánicas esenciales
Temperatura del mar, salinidad y densidad
Esta es una variable clave para los pronósticos meteorológicos y de las condiciones
oceánicas, así como para el estudio de la variabilidad océano-atmosférica y lacomprensión y pronósticos de eventos ENOS. Determina además los rangos dedistribución y cambios fisiológicos y de comportamiento de distintas especies.
Globalmente, los registros históricos de temperatura superficial del mar (TSM) son
los más largos y pueden ser medidos por diferentes instrumentos. En la RMG, elregistro más largo disponible corresponde a la Estación Científica Charles Darwin,
registrado manualmente a diario, con un termómetro simple, desde 1965 hasta
la fecha. Se cuenta además con datos satelitales de MODIS y AVHRR con una
resolución de 9 km2 hasta 1.1 km2 y estudios de su variabilidad (Banks 1999) (figura15-3). También es común el uso de productos de reanálisis, como el Atlas Mundialdel Océano (WOA, por sus siglas en inglés) y el reanálisis de Reynolds, los cuales
combinan toda la información disponible, in situ y satelital, mediante técnicas deinterpolación óptima, para extender la cobertura espacial y temporal de los datos.
Localmente, varios cruceros oceanográficos han registrado la temperatura delmar en fechas específicas, incluidos los perfiles realizados por cruceros regionalesdel B.I. ORION - INOCAR. Adicionalmente, se cuenta con una red de sensores detemperatura (HOBOs) ubicados en distintos puntos del archipiélago a 10 y 20 m deprofundidad, permitiendo el estudio específico de la variabilidad intraestacional ysu correlación con la biota en sitios clave de la RMG.
Aunque el océano exhibe un menor rango de variabilidad temporal, la salinidad
es sumamente importante para la caracterización de zonas intermareales yhumedales. En estos ambientes, la salinidad puede cambiar drásticamente bajo

96 Manual de Monitoreo Submareal

Figura 15-3: Superficies de clima marino
de Galápagos (temperatura superficialdel mar) (A: anomalías de agua fría;
B: anomalías de la agua caliente; C:
rango en anomalías medias) calculadaa partir de 5 años de datos mensuales.
Unidades en grados Celsius. Nos dan
pistas útiles en cuanto de las diferencias
a pequeña escala de temperatura parala futura rezonificación hacia APMs
'clima inteligente (climate smart)'.
Blancos límites indican zonas deafloramiento constantes importante parala biodiversidad y la supervivencia de lamayoría de especies marinas y costeras.
(Visualización realizado con Fledermaus
software).

la influencia de lluvias o de la marea. En el ámbito oceanográfico, la salinidad es
utilizada en conjunto con la temperatura y la profundidad (presión hidrostática)
de la muestra para el cálculo de la densidad del agua salada y la caracterizaciónde masas de agua. En la actualidad, la salinidad es calculada por instrumentos
electrónicos (e.g., CTD, salinómetro) a partir de la medición de la conductividad
eléctrica. La estandarización de estas mediciones convierte a la salinidad en
una medida no-dimensional que se reporta en 'unidades prácticas de salinidad'(PSU, por sus siglas en inglés). El cálculo de la densidad puede ser realizado
internamente por el CTD, o externamente mediante la ecuación de estado. Las
diferencias de densidad y los gradientes horizontales de presión hidrostática,
asociados con las mismas, determinan procesos oceánicos clave como el flujo
geostrófico (corrientes), la estratificación del océano y la turbulencia.
Plancton
Son organismos usualmente menores de 2 cm y con poca o nula capacidad motriz
horizontal, los cuales constituyen los eslabones base de la cadena trófica marina.
Por ello, es necesario realizar análisis cuantitativos (productividad primaria,
abundancia y cálculos de biomasa) y cualitativos (identificación de especies ydibujos de los organismos) del plancton. Dichos análisis proveen información
relevante, por ejemplo, para conocer la disponibilidad y el valor nutricional delEdición por Stuart Banks 97

alimento ingerido por peces y otros animales planctívoros. La abundancia defitoplancton también tiene implicaciones sobre ciclos químicos del océano, comoel ciclo del carbono, nitrógeno, fósforo y silicio, e impacta en la distribución
espacial y vertical del oxígeno en las aguas y sedimentos de zonas someras.
Por lo tanto, el conocimiento de la abundancia, distribución y variabilidad del plancton
fortalece la capacidad de los modelos tróficos para describir efectos directos dela variabilidad climática sobre el ecosistema marino-costero de Galápagos y ladefinición de umbrales de riesgo del ecosistema. Se cuenta con información decaracterizaciones de plancton de Galápagos desde 1980 a 1990 por publicaciones
de INOCAR, sin embargo la información en crudo es de acceso limitado. Los
monitoreos ecológicos de NASA - FCD entre 2005 y 2007, produjeron mapeos
de grupos funcionales de zooplancton (animales) y catálogos de especies defitoplancton (vegetales) en las islas, y adicionalmente se han recolectado muestras
durante los monitoreos ecológicos anuales de la FCD alrededor del archipiélago. Se
cuenta, además, con un banco de muestras colectadas semanalmente por la DPNG
en Santa Cruz. Sin embargo, el análisis de estas muestras requiere de una inversión
significativa y de tiempo y capacidad técnica en la identificación de especies. La
metodología aplicada para colecciones de plancton se encuentra descrita en lasección de 'Muestreos de plancton', dentro de este capítulo.

La clorofila-a es el principal pigmento del fitoplancton y, por lo tanto, una medida aproximadade su abundancia. La clorofila-a puede cuantificarse a partir de muestras in situ mediantemétodos analíticos químicos y por fluorescencia.
La clorofila-a es el principal pigmento del fitoplancton y, por lo tanto, una medida
aproximada de su abundancia. La clorofila-a puede cuantificarse a partir demuestras in situ mediante métodos analíticos químicos y por fluorescencia.
Durante los monitoreos NASA - FCD, se instalaron CTDs en estaciones fijas
en sitios clave de la RMG (Schaeffer et al., 2008), equipados con fluorímetros
WETlabs para caracterizar la columna de agua hasta 100 m de profundidad. Los
sensores de fluorescencia se basan en que la clorofila-a absorbe y reemite luz en
determinados rangos del espectro visible. Así, el instrumento dispara un rayo de
luz a la muestra de agua y mide la luz reemitida. Sin embargo, distintas especies defitoplancton exhiben distintos rangos de tolerancia a la luz y poseen mecanismospara bloquear la absorción de luz cuando el nivel de iluminación excede su límite
característico. Por ello, los valores de fluorescencia deben ser calibrados mediantela filtración de muestras de agua y extracción de clorofila por métodos químicos
para su medición con espectrofotometría o cromatografía.
Además, desde 1997 existen mediciones de clorofila-a mediante sensores
remotos. De manera similar a los métodos de fluorescencia, los sensores remotos
utilizan algoritmos diseñados para calcular la concentración de clorofila-a a partirde la luz incidente y la luz absorbida y reemitida por el océano y sus componentes.
La validación de la clorofila satelital con datos in situ es de especial importancia enáreas cercanas a la costa ya que los sedimentos y materia orgánica disueltos en elagua pueden interferir con las mediciones satelitales.
Nivel del mar y oleaje
Son directamente utilizados para la prevención de peligros en las actividades
marinas de tráfico y recreación, alertas de oleaje y tsunamis. INOCAR, a través depersonal de las Capitanías de Puerto, mantiene mareógrafos para el pronósticode mareas en las islas San Cristóbal, Santa Cruz y Floreana. Puede encontrarse
información histórica referencial para las islas Darwin e Isabela. La información demareógrafos nacionales se une a una red internacional.

98 Manual de Monitoreo Submareal

Durante eventos fuertes de ENSO, por ejemplo, se han registrado aumentos
promedio de 20 cm en el nivel de mar. Los pocos ejemplos de tsunamis registrados
demuestran diferentes magnitudes de penetración dentro de la franja costera,
determinados por la batimetría del sitio y la exposición al frente de las olas. Durante
el paso del conjunto de ondas tsunamigénicas en el 2011 (tsunami de Japón) se
registraron amplitudes de onda de entre 50 cm hasta 2 m, con penetración dehasta 6 m en ciertas bahías expuestas (Lynett P et al,. 2011; Kuhn y Koch, 2011).
Corrientes
Fueron caracterizadas inicialmente en las décadas de 1960 a 1980 para todo
el Pacífico Tropical (Wyrtki 1966, 1981, 1985 b). Caracterizaciones actuales
confirman la dinámica general de las corrientes ecuatoriales, sin embargo, sonnecesarios estudios a microescala sobre circulación costera para planes decontingencia para derrames de combustible, identificar sitos de importancia
para asentamiento de larvas y predecir la distribución de posibles brotes deespecies invasoras marinas. Desde el 2007, por lo menos dos grupos siguen
trabajado en modelos de circulación incluyendo la FCD-NCSU, modelo de
HyCoM (Hybridized Coordinate Model a 4 km2 resolución espacial) (figura15-4) y ROMS (Regional Ocean Modeling System) por el grupo de modelaciónde INOCAR basado en Guayaquil.

Figura 15-4: Desarrollo de modelos decirculación. Gracias al aumento del podercomputacional y de datos satelitales, laresolución de los modelos del océano
ha incrementado en los últimos años.
Tomando como base modelos globales,
es posible desarrollar modelos regionales
con resolución espacial variable quehagan énfasis en zonas de interés comoGalápagos (aquí la malla de modelaciónde HyCoM en desarrollo entre el 2009 y el
2014 por Lui et al. (NCSU, EE.UU)).

Existe un sistema global de boyas automáticas del programa ARGO –con
algunos lanzamientos dentro del archipiélago – los cuales hacen perfiles
verticales llevados por la corriente y boyas lanzadas por NOAA-Hazmat durante
el derrame de M/V Jessica en el 2001. Desde el 2013 al 2016, el Proyecto
ROGER (Woods Hole, Scripps, FCD-DPNG e INOCAR) obtendrá nuevos datos
con el uso de vehículos autónomos preprogramados para seguir la dinámica
de la subcorriente ecuatorial al oeste.
Batimetría y mapeo del fondo profundo de alta resolución
Mapas de alta resolución han sido generados para áreas de importancia biológica
como el Canal Bolívar y el sur de Isabela, asociados con áreas de abundanciade pepino de mar y langosta roja espinosa. Contamos además con mapeos debatimetría y reflejo de sonar del fondo (side-scan sonar) del área norte de la RMG,
generados en el 2010 en la embarcación RV Melville (figura 15-5) y un mapeo delcampo electromagnético generado por depósitos de hierro en el plano abisal. La
mayoría de esta información esta subida en línea en el portal de GeoMapApp, parafines de investigación.

Edición por Stuart Banks 99

Figura 15-5: Mapeo de alta resolucióndel área noroeste de la RMG, con capas
simultáneas de batimetría y sonar(side-scan) que caracterizan el sustrato
profundo (crucero R/V Melville 2010).

Calidad del agua
Figura 15-6: Preparación del equipo
CTD dentro de una juala de aceroinoxidable para su protección, consensores ISUS para medición denitratos y fluorímetro WetLabs (chl-a),en el laboratorio marino de la FCD.

Por el valor que tiene el agua para fines recreativos y de conservación, los parámetrosde calidad del agua reúnen diversos análisis químicos y organolépticos de las
aguas costeras, principalmente de las áreas cercanas a poblaciones humanas.
La DPNG y la Cooperación Japonesa JICA realizaron monitoreos entre el 2005
y el 2007 en Santa Cruz, San Cristóbal e Isabela. Los parámetros que requieren
especial importancia son indicadores de eutrofización (nitratos, nitritos, fosfatos),
coliformes, hipoxia y contaminación por metales pesados o hidrocarburos.

Plataformas utilizadas para la tomade datos oceanográficosInformación Satelital
Los satélites o sensores remotos registran información sobre la radiación solarreflejada y reemitida por la superficie del océano en distintos rangos del espectro
electromagnético, incluyendo el rango de luz visible y el rango infrarrojo. En palabras
simples, los satélites miden el color y el calor de la superficie del océano y envían
regularmente esta información a la tierra. Mediante la aplicación de algoritmos
matemáticos, los datos satelitales son transformadas a productos de informaciónútiles como la temperatura superficial del mar (TSM) y la clorofila-a (chl-a).

En palabras simples, los satélites miden el color y el calor de la superficie del océano y envían
regularmente esta información a la tierra.
Los satélites que proveen información global rotan alrededor de la tierra en unaórbita polar, es decir, que en cada vuelta, el satélite pasa tanto por el polo norte
como por el polo sur. Los satélites de investigación usualmente viajan a 700 km
de altura, y durante su trayecto los sensores recopilan información en transectosde 2300 a 2800 km de ancho. Gracias a esto, millones de puntos de datos sobre
Galápagos son remotamente colectados cada semana.
En el 2001 se instaló una Estación de Recepción Satelital Remota (High Resolution
Picture Transmission Station) en el techo del laboratorio marino de la FCD. El

100 Manual de Monitoreo Submarealpropósito de dicha estación fue la recolección directa de datos de alta resolución(1.1 km2) de los sensores NASA-SeaWiFS (Sea Wide Angle of Viewing Field
Sensor, principalmente para datos de chl-a) y NOAA-AVHRR (Advanced Very High
Resolution Radiometer, para datos de TSM). La estación se mantuvo durante
4 años como parte de una red mundial de investigación del clima global. La
misión del satélite SeaWiFS continuó con éxito hasta el 2010, cuando el satélite
fue retirado de órbita. Previo a su retiro, se dio inicio la misión del nuevo sensor
MODIS-Aqua (Moderate Resolution Imaging Spectroradiometer) en el 2002. La
operación simultánea de ambos satélites responde a la necesidad de un periodo
de calibración para asegurar la compatibilidad de los datos. El sensor MODIS
continúa en operación hasta el presente y la obtención de datos es posible deforma directa mediante nodos de descarga desde el satélite hasta bases derecepción en EE.UU y Europa.
Los datos de la NASA y la NOAA se encuentran disponibles en varios portales enlínea, de acceso libre para usos de investigación y fines no comerciales. Uno de losprotocolos estándar de solicitud de transferencia de archivos es llamado OpenSource Project for a Network Data Access Protocol (OPeNDAP). Este protocolo
permite el acceso a productos satelitales almacenados en servidores remotos,
como si se encontrasen en el computador local, permitiendo su uso mediante
diversos programas de análisis de datos, así como la rápida visualización deinformación sobre sus contenidos y la extracción de subconjuntos de datos(fechas y/o áreas específicas). Existen otras plataformas visuales para la
extracción de subconjuntos de datos, sin embargo, las mismas se encuentran
sujetas a actualizaciones y cambios. Actualmente, los datos satelitales pueden
ser descargados a través del servidor FTP (File Transfer Protocol) anónimo:
ftp://podaac-ftp.jpl.nasa.gov/. En el 2004, el proyecto de SeaWiFS abrió unacceso regional directo para consultas diarias (Near Real Time Product) paralas autoridades nacionales y la FCD; el cual se encuentra actualmente disponible
como un servicio abierto a usuarios registrados con el Programa de NASAOcean Color.

Actualmente, los datos satelitales también pueden ser descargados a través del servidor FTP(File Transfer Protocol) anónimo: ftp://podaac-ftp.jpl.nasa.gov.
El conjunto global de datos satelitales posee un altísimo volumen y requiere
información detallada para su uso adecuado. Por ello, los archivos originales
se encuentran usualmente comprimidos (*.gz) y en formatos que permiten el
almacenamiento de metadata como HDF (Hierarchical Data Format, *.hdf) o Net-CDF(Net Common Data File format, *.nc). Los archivos contienen datos geoespaciales
y pueden ser trabajados en programas especializados como NASA-SeaDAS opaquetes de programación gratuitos (Python, Ferret) o comerciales (MATLAB, IDL),
los cuales permiten leer grandes cantidades de datos, así como realizar operaciones
complejas, además de poseer herramientas de visualización gráfica.

Dadas las restricciones de conectividad al Internet en las islas, la FCD mantiene y actualiza
con frecuencia un banco local de datos satelitales. En lo posible, estos datos se encuentrantransformados a formatos más simples (por ejemplo, *.xls, *.cvs, *.txt) para su análisis conlas herramientas disponibles localmente.
En general, el uso de los datos originales es computacionalmente demandantey requiere tanto de recursos informáticos como de personal técnico y científico
especializado para su uso eficiente y adecuado. Dadas las restricciones deconectividad al Internet en las islas, la FCD mantiene y actualiza con frecuencia
un banco local de datos satelitales. En lo posible, estos datos se encuentrantransformados a formatos más simples (por ejemplo, *.xls, *.cvs, *.txt) para su
análisis con las herramientas disponibles localmente. En el 2014, se realizó ellanzamiento inicial del primero de los nuevos satélites de la Agencia Espacial
Europea (ESA - Sentinel), mediante el cual se ingresarán datos disponibles desensores aún más avanzadas y con mayor resolución.

Edición por Stuart Banks 101

Cruceros oceanográficos anualesEs una plataforma histórica y actualmente en uso, provista en gran parte por los
cruceros regionales del B.I. Orión del INOCAR que se realizan anualmente entre
septiembre y octubre. Debido a la ausencia física de INOCAR en el archipiélago
antes del 2006, los resultados de dichos cruceros (resumidos en las Actas
Oceanográficas de la institución) han sido hasta la fecha subutilizados localmentey algunos carecen de un contexto local adecuado para la información recopilada.
Esta situación ha cambiado significativamente con la apertura de oficinas ylaboratorios de INOCAR en las islas.
Entre el 2004 y el 2007, la FCD y la DPNG, con soporte de la NASA, realizaron una
serie de 5 cruceros estacionales entre estaciones calientes y frías para recopilar
información de línea base sobre el régimen de las masas de aguas con influencia
en el archipiélago. Se caracterizó el ambiente productivo y los patrones de plancton
y se recopiló un juego de datos hiperespectrales in situ para mejorar los algoritmos
utilizados para calibrar los sensores remotos satelitales (figura 15-7).

Figura 15-7: Un instrumento HyperSAS
montado en la proa del M/N Sierra
Negra mientras se acerca a isla Wolf
toma perfiles hiperespectrales deradiación E-M del agua. En modo demuestreo continuo durante cruceros,sirve para caracterizar grupos defitoplancton por sensores parecidosmontados en satélites.

Instalación de estaciones fijas
Se refiere a equipos instalados, ya sea en la superficie (boyas oceanográficas) o
subsuperficialemente (equipos anclados), para el registro continuo de variables
como la temperatura del mar y las corrientes. Estas instalaciones deben, en lo
posible, hacer uso del vasto conocimiento sobre las áreas con hábitats claves en la
RMG, y así responder a las necesidades de manejo ambiental de la reserva.
Se destaca la importancia de la zona de afloramientos al oeste de Isabela, lacual corresponde al área con mayor variabilidad temporal en términos detemperatura del mar y producción primaria (Banks 1999). La variabilidad
interanual de este afloramiento está directamente relacionada con ENOS:
durante los eventos de El Niño, la zona de afloramiento se reduce o desaparece
por completo debido a cambios en los patrones físicos del océano. Es necesario
estudiar con profundidad si la intensidad del afloramiento puede convertirse en
un indicador local de la incidencia de eventos El Niño que se limitan al Pacífico
Central, conocidos como El Niño Modoki (Ashok et al. 2007). Por ejemplo, aunquefuertes anomalías termales se registraron en los índices ENOS en el 2009, es
posible que el afloramiento en Galápagos se haya mantenido, evitando mayores
desequilibrios en el balance ecosistémico. Los datos de monitoreo ecológico
submarino y otras fuentes de información aquí descritas pueden ser utilizadas
como base para comprobar esta hipótesis.

102 Manual de Monitoreo Submareal

Las islas del extremo norte, Darwin y Wolf, es otra de las áreas de importancia
para la investigación y el manejo. Aquí el monitoreo se relaciona con hábitats decoral sensibles y agregaciones únicas de especies de tiburones; así como conla variabilidad meridional del frente ecuatorial. Tanto en sitios del oeste, comoen las islas del norte se han colocado sensores simples de temperatura, que
almacenan registros de temperatura a profundidades específicas por periodos
de varios meses. Las características de estos sensores, así como la información
sobre su instalación, se detalla en la sección de 'Métodos de colección de datos
oceanográficos'. Los registros más antiguos empiezan en 1997 y provienen
de sensores colocados en Punta Espinoza y Fernandina (en el oeste), y en el
fondeadero de Wolf. Sin embargo, las series en estos sitios sufren de vacíos dedatos por periodos de pocos días a varias semanas, provocados por sobrepasar
el límite de la memoria del instrumento antes de su recambio. Una de las series
más extensas corre desde 1999 hasta el presente, con sensores instalados por elcientífico dr. Jon Witman en 12 paredes verticales en la parte central de las islas(figura 15-8). Todos estos sitios constituyen una prioridad para el mantenimiento
de series comparables en el tiempo.

Figura 15-8: Cobertura de muestreo insitu 2005-2010. Estaciones de muestreo
oceanográfico por cruceros estacionales
por el proyecto DPNG-NASA-Glps
Ocean (2005- 2007), el NSF B/I Melvilleen el 2010, e instalaciones fijas de
instrumentos, sobreimpuesto en un mapade sensibilidad basado en distribuciones
de vertebrados costeros.

Adicionalmente, el monitoreo de pingüinos y cormoranes mantuvo 10 estaciones
con sensores en el oeste desde el 2004 al 2006 y, a partir del 2010, se restablecieron
nuevos puntos cerca de las colonias más importantes. También se han instalado
sensores de temperatura como parte de los estudios de tiburones en Wolf y Darwin
y puntos de agregación de escuelas en la zona central.
Otras instalaciones de instrumentos se han mantenido temporalmente para
complementar proyectos específicos. En los años 2004 a 2007, el proyecto deNASA-Ocean instaló 5 YSI-CTD Sondes (instrumentos que registran datos declorofila, salinidad y temperatura) en boyas oceanográficas en 5 puntos de la
RMG. Durante dicha experiencia se observó que el sobrecrecimiento de balanos
y otros organismos bentónicos es particularmente rápido en el norte, por lo que
es necesario hacer un mantenimiento cada 3 meses para evitar el daño y/opérdida del equipo (figura 15-9). Además, los proyectos de INOCAR han mantenido
mareógrafos y medidores de corrientes (ADCP, Acoustic Dopler Current Profiler) en
varios sitios del archipiélago.

(Imagen: A. Hearn)

Edición por Stuart Banks 103

Figura 15-9: Preparación yrecuperación de boyas oceanográficas
submareales para limpieza y
reprogramación de instrumentos.
Una consideración para la flotabilidad
requerida de las boyas submareales
y longevidad de los sensores es elsobrecrecimiento de Megabalanus Sp.,particularmente en las islas norteñas.

Estaciones de Monitoreo Frecuente
Se trata de sitios de visita con frecuencia semanal, quincenal o mensual, en donde
se realizan mediciones o muestreos. Esto se ha hecho previamente en sitios como
Bahía Academia y Floreana, obteniendo perfiles de CTD y muestras de plancton.
Sin embargo, aún no existe un sistema que asegure el análisis de datos y la entrega
eficiente y oportuna de resultados. Otros puntos como Bahía Barahona y Quinta
Playa se han consolidado como estaciones temporales de registro de temperaturadel mar durante las temporadas de monitoreo de anidación de tortuga verde marina,
proveyendo series cortas anuales durante la época cálida. En consideración a este
tipo de plataformas, es importante balancear la innovación con la continuidad de la
información. Es preferible mantener o reiniciar el monitoreo en un sitio previamente
utilizado, a incorporar nuevos sitios cuya continuidad histórica es nula y/o incierta
a futuro.
Viajes de Monitoreo Ecológico
Realizados desde el 2004 por la FCD como continuación de los viajes que
generaron la Línea Base de la Biodiversidad y la actual biogeografía de la RMG. En
el 2005 y 2006 se realizaron dos monitoreos por año, permitiendo la comparación
entre estaciones climáticas. Desde el 2007 hasta la actualidad se cuenta condatos anuales de la estación cálida, entre marzo y junio. Durante los viajes demonitoreo se han realizado muestreos de plancton y fitoplancton y medición deperfiles de CTD en los sitios diagnósticos seleccionados para averiguar cambios
en comunidades submareales. Los viajes de monitoreo ecológico son, además,
una plataforma para el recambio de sensores simples de temperatura instalados
mediante buceo autónomo.
Embarcaciones Voluntarias
Propuestas por sectores de turismo interesados en el desarrollo de la “ciencia
ciudadana”, permiten el involucramiento de visitantes en la toma de datos como latemperatura superficial del mar durante sus cruceros en la RMG. Actualmente, esta
plataforma concede espacios para la participación de personal científico / técnico
durante los cruceros, los cuales se utilizan de forma esporádica; sin embargo, un
modelo ideal para esta plataforma debe trabajar directamente con capacitaciones
al grupo de guías involucrados y en la simplificación de las variables monitoreadas
y los métodos de registro, análisis y difusión.

Instalación de una boya oceanografica bajo la superficie con instrumentación CTD-Fl (YSI Sonde). (Imagen: R. Pépolas)

104 Manual de Monitoreo Submareal

Red de rastreo pelágico
Involucra la posibilidad de utilizar sensores de temperatura en los dispositivosde marcaje actualmente utilizados en proyectos de uso de hábitat y patrones
migratorios de especies como el tiburón martillo, tiburón ballena, tortuga verde
marina, bacalao, entre otros. Este tipo de integración entre investigadores de rastreo
biológico y oceanógrafos físicos tiene gran auge contemporáneo, demostrando lafactibilidad de acoplarlo al sistema de observación (Boehme et al. 2010). Animales
con hábitos de buceo como lobos marinos, pingüinos o cormoranes permiten
mediciones similares a perfiles de CTD en sitios muchas veces inaccesibles,
aumentando considerablemente el conocimiento de la dinámica oceánica yacoplando la toma de datos directamente con comportamientos de individuos.
Sin embargo, por la naturaleza de las diversas matrices de datos obtenidas, laintegración de esta plataforma requiere de un desarrollo de metodologías deanálisis de datos y capacitación adecuada.

Tortuga Chelonia mydas y cardumen de
Pámpanos acerado Trachinotus stilbe(Imagen: M. Vera)

Científicos colaboradores y visitantes
Una parte considerable del conocimiento oceanográfico sobre la RMG ha sido
recabado gracias a investigadores internacionales y nacionales con financiamiento
externo, quienes voluntariamente comparten sus resultados con la comunidad
científica local. Un marco óptimo de trabajo debe facilitar la disponibilidad de dicha
información y asegurar la correcta acreditación de sus fuentes, y así, consolidar lacontinuidad del conocimiento recopilado y evitar la duplicación de esfuerzos.
Además, cada año existen oportunidades para colaborar en los cruceros
internacionales de investigación que visitan la RMG. En estos casos, se requierede esfuerzos para perfeccionar los procesos de obtención de permisos deinvestigación. Aparte de los aportes a la ciencia mundial que realiza estudios enla Reserva, podemos ayudar a que los datos levantados estén aplicados dentro
un contexto de ciencia para la conservación de las Isas y el fortalecimiento delconocimiento local.

Tiburones martillo, Sphyrna lewini(Imagen: A. Hearn)

Tiburon piloto, Carcharhinus falciformis(Imagen: G. Soler)

El rastreo de especies pelágicas en la región ha sido realizado en coordinación científica de redes de socios como MigraMar (www.migramar.org).

(Imagenes: R. Gallardo)

Edición por Stuart Banks 105

Métodos de colección de los datos oceanográficos
Sensores de temperatura
Desde 1997 se han utilizado sensores de temperatura de la compañía Onset® HOBO®
data Loggers (http://www.onsetcomp.com/), los cuales constituyen una opción
práctica y económica para instalaciones submarinas en la reserva. Estos sensores
disminuyen considerablemente los riesgos económicos ocasionados por la pérdidade instrumentos costosos, ya sea por turbulencia, sedimentación, derrumbes,
lobos marinos o buzos curiosos; requiriendo una inversión de aproximadamente
USD 150 por sensor, en comparación con los más de USD 15 000 requeridospara un instrumento complejo. El diseño de sus productos cambia por años, perobásicamente son pequeñas unidades selladas desde la fábrica, con una vida útil dealrededor de 4 a 6 años. Permiten la programación específica de la frecuencia demedición (desde segundos hasta días), lo cual determina la cantidad de datos que
podrán ser almacenados en la memoria del instrumento. La frecuencia de medición
recomendada es de 1 registro cada 30 minutos, lo cual almacena 905 días utilizando
los últimos modelos con 32K de memoria, y captura de forma adecuada la señal devariabilidad de alta frecuencia de la termoclina en cada sitio.

Estos sensores disminuyen considerablemente los riesgos económicos ocasionados por lapérdida de instrumentos costosos, ya sea por turbulencia, sedimentación, derrumbes, lobos
marinos o buzos curiosos.
Para la instalación y uso de estos sensores, además, se requiere contar con el
programa de configuración (HOBOWARE), instalado en el computador portátil quese lleve al campo, y con el dispositivo base con conexión USB para comunicar el
instrumento con el computador y poder programarlo. También se debe realizar
una prueba de cada sensor, previo a la salida de campo, para asegurar su
funcionamiento adecuado.
Además de la programación del instrumento antes de su instalación, se debe ingresar
en una hoja 'log book' de Excel: la identificación (id) de la unidad, el intervalo entre
mediciones, la fecha de programación, el sitio, la profundidad y la fecha y hora de inicio
de las mediciones (puede ser posterior a la fecha de programación). Dicho formato
en Excel se encuentra entre los materiales digitales para el monitoreo ecológico.
Cada sensor se envuelve con cinta adhesiva extrafuerte ('cinta ploma' o 'duct tape'),sobre la cual se escribe con marcador permanente la profundidad de la instalación
como referencia. El sensor se introduce en un tubo corto de PVC con agujeros para
asegurarlo con bridas plásticas (cable ties) y sogas lo suficientemente largas para ser
atadas bajo las rocas o en el sitio considerado oportuno (figura 15-10).

Figura 15-10: Programación, preparación y colocación de los loggers de temperatura. Normalmente se requiere pruebas en el laboratorio antes deuna salida para asegurarse de que funcionan correctamente en el campo. Su tiempo instalado puede durar meses y hasta años. Así, es primordial
que los intervalos de medición estén como se requiere y que estén activados (normalmente visible por medio de una LED).

106 Manual de Monitoreo Submareal

La inmersión de instalación debe realizarse al menos por dos buzos que seanpersonal fijo del monitoreo para mantener la memoria de la ubicación delinstrumento, utilizando puntos de referencia, la profundidad (tomando en cuenta
el estado de la marea) y el rumbo de la brújula en caso de que la visibilidad sea
limitada. En ausencia de una formación rocosa llamativa, es aconsejable instalar
referencias como una varilla de acero o una boya pequeña que sirva de guía paraencontrar el sitio exacto y/o confirmar que es la zona correcta. Se debe evitar dejar
marcas visuales directamente en el sitio; esto reduce la posibilidad de pérdidade instrumentos causada por la curiosidad de otros visitantes al sitio. Se deben
describir las indicaciones de cómo llegar al sitio con dibujos para cada profundidad(figura 15-11) e instrucciones en la hoja de registro de los sensores.

Figura 15-11: Un ejemplo de un mapa preparado como ayuda de memoria para reencontrar una estación fija submareal de temperatura instalado
a 10 m y 20 m de profundidad en la costa de Isabela. Otros métodos incluyen uso de transpondedores que emitan señales al buzo o que marquen
el sitio visiblemente bajo el agua. Sin embargo, el método más práctico para evitar pérdidas es en el que los instrumentos quedan escondidos pero
su ubicación bien conocida por 2 o 3 buzos que conocen el área, tomando referencias fijas como formaciones de arrecife distintas y rumbos por
profundidades desde un punto de inmersión de GPS. Esta forma constituye un reto, sin embargo, es posible encontrar los instrumentos, incluso en
agua con mala visibilidad.

Edición por Stuart Banks 107

Perfiles de la columna de agua por el instrumento CTD
El CTD (conductividad, temperatura y profundidad) es uno de los instrumentosmás útiles y versátiles para caracterizar el ambiente en un sitio. Frecuentemente,
cuenta con un fluorímetro integrado para la medición de clorofila-a (chl-a). Sonequipos sofisticados y costosos, por lo que se recomienda asignar a un responsablepara su uso, manejo y cuidado. Requiere de un mantenimiento adecuado y una
recalibración por la fábrica de cada 2 a 4 años.
Previo al envío del instrumento al exterior, ya sea para mantenimiento o calibración,
deben considerarse complicaciones potenciales con la aduana y realizar lostrámites pertinentes para prevenirlas.
La unidad utilizada por la FCD (y donado a la DPNG en el 2010) es un CTD SeaCat
19-Plus, el cual cuenta con 7 módulos adicionales para instalar otros sensores. El
uso más común del CTD es realizar perfiles verticales o 'casts' de la columna deagua (modo de perfil), sumergiendo el instrumento manualmente, o con el uso de
un winche, en un sitio con una profundidad mínima de 15 a 30 m. En aguas muy
someras es probable que la temperatura sea constante en toda la columna deagua por efecto directo de la radiación solar y el viento, y el uso de un termómetro u
otro instrumento simple sea más conveniente. El CTD puede utilizarse conectado
a la computadora durante la inmersión, utilizando los cables y conectores
correspondientes, para la transmisión en tiempo real y almacenamiento directode datos en una computadora; o puede programarse para almacenar datos
tanto en modo de perfiles verticales, o como instrumento anclado o 'moored'(ver sección de 'Plataformas de toma de datos oceanográficos'). El instrumento
se programa mediante un conector de interfaz RS-232C que se comunica con
Tabla 15-1: Especificaciones de los instrumentos oceanográficos utilizados de manera rutina en el monitoreo de la RMG.
HOBO Water Temperature
Pro v2 (U22-001)

Temperature TidbiT
v2(UTBI-001)

SeaBird SeaCat Profiler
19-Plus v2

Temperatura hasta
400 pies

Temperatura hasta
1000 pies

Temperatura, salinidad, presión(profundidad), densidad, flurometría(Chl-a) con opciones de 02 disuelto, pH,
etc. por módulo (7 disponible).

~ 6 años

~ 5 años

8 x baterías D; ~60 horas de operación.

5 min

5 min

0.25 segundos.

Memoria

32K; 42,000 medidas

32K; 42,000 medidas8-16MB (y 100 perfiles).

Rango de intervalos

1 segundo a 18 horas

1 segundo a 18 horas

0.25 segundos y arriba.

-40° a 50°C

-20 Deg.C a 30 Deg.C

Varía con sensor.

±0.21°C±0.2°C±0.005 °C,, 0.0005 PSU (salinidad).

0.02°C @ 25°C

0.02°C @ 25°C

0.0001°C @ 25°C.

· Instalación en sitios
costeros a 10 m y 20 m deprofundidad en un tubo de
PVC para su protección.
Instalado bajo de rocas ensitios bien mapeados.

· Instalaciones
en tratamientos
experimentales
y cadenas determistores.

· Instalaciones extendidos en sitios(moored).
· Perfiles verticales de la columna deagua hasta 100 m.
· Transmisión de datos instantáneo (concable a la superficie).

Parámetros
Vida de batería
Tiempo de respuesta
en agua

Rango de lectura
Precisión
ResoluciónUsos

108 Manual de Monitoreo Submarealla terminal del programa SeaTermV2© para facilitar la configuración y el acceso
a los datos grabados en el instrumento. Los datos obtenidos se guardan enformato hexadecimal, que puede transformarse a formato ASCII (*.txt) mediante
los programas SeaSoft (Data Processing), proporcionados con el instrumento,para permitir el procesamiento posterior de los datos (figura 15-12). Los detallesde cada instrumento son particulares a su modelo y se recomienda la revisión
cautelosa de los manuales de operación para mayor información sobre su
configuración y características. La configuración predeterminada es en modo deperfil, con frecuencia de 4 registros por segundo (4 Hz).
Figura 15-12: Perfiles verticales de temperatura, salinidad y fluorescencia de la clorofila-a en dos sitios (El Muñeco y la mitad del Canal Bolívar, en
Isla Isabela), en los que se observan termoclinas (zonas de rápido cambio de temperatura) fuertes y de poca profundidad. Además, se observan dos
distribuciones diferentes de fluorescencia: en El Muñeco, la distribución es homogénea en la superficie; mientras que en el Canal Bolívar se observa
un máximo subsuperficial.

Antes de realizar perfiles verticales en campo, se debe realizar un prechequeo en
el laboratorio para constatar el funcionamiento adecuado del instrumento y de susbaterías, conectándolo a un computador para la transmisión de datos directos. Se
recomienda que sea manipulado por dos personas para su lanzamiento manual
y que sea sujeto mediante un cabo de buena calidad de por lo menos 0.25-0.5
pulgadas de grueso y 70 m de extensión. El cabo debe asegurarse con nudos
confiables al mosquetón del instrumento u otro mosquetón fuerte de acero, y/o a
la caja de acero del instrumento.
En el sitio de muestreo, se debe verificar la profundidad del sitio mediante losinstrumentos de la embarcación, o con un profundímetro si el lanzamiento serealiza desde una panga o bote pequeño, y se deben almacenar las coordenadasdel sitio en el GPS. Se debe registrar en papel (o computador impermeable decampo) el nombre y/o código del sitio, las coordenadas exactas y la profundidad.
Se debe solicitar al Capitán de la embarcación o al panguero que pongan el motoren modo neutral. Luego, se procede a encender el CTD y se sumerge levemente
por debajo de la superficie durante 2 minutos para su “aclimatación”. La bombaque circula agua por los sensores está programada de forma predeterminada
para empezar a trabajar después de unos 45 segundos y jamás debe funcionar
fuera del agua por más de 30 segundos para no dañar el motor. Transcurridos
los 2 minutos, se debe bajar el instrumento a una velocidad constante que nosupere los 30 cm por segundo. Tanto en el lanzamiento manual como cuando
se utiliza un winche, una persona debe encargarse de desenredar el cabo
conforme se necesite. Es recomendable atar el final de la soga a algo fijo enla embarcación. Se debe llevar la cuenta de cuántos metros se ha sumergido
el instrumento para evitar que toque el fondo. Esta prevención es importanteno sólo porque al tocar el fondo se pueden levantar sedimentos e interferir con
algunas mediciones (especialmente fluorescencia y parámetros químicos), sino
porque el CTD puede quedar estancado en una roca o bajo un submarino. Paraobtener un registro adecuado solo es necesario sumergir el instrumento hasta

Edición por Stuart Banks 109

la profundidad deseada y retornarlo a la superficie a una velocidad constante.
El CTD almacenará los perfiles de inmersión y ascenso, los cuales pueden serseparados posteriormente durante el análisis de datos o utilizados como unpromedio.
Una vez que el instrumento retorna a la superficie, se debe apagar lo más pronto
posible para evitar el mal funcionamiento de la bomba de agua y el consumo
innecesario de la batería. Después de cada viaje, es imprescindible enjuagar con
agua dulce el instrumento y descargar todos los datos, así como documentar otros
detalles importantes del muestreo. El programa de descarga de datos también
permite descargar encabezados con información adicional sobre cada perfil, loscuales deben mantenerse como archivo de referencia junto a los datos.

Muestreos de plancton
Métodos de colecta y cuantificación
El principal instrumento para la colecta de plancton es la red de plancton; sinembargo, tanto la red como su metodología de uso, pueden presentar diferencias
o modificaciones según los objetivos del muestreo. La red de plancton, como su
nombre indica, es una malla fina o red, usualmente con forma cónica; cuya basese encuentra abierta mediante un marco circular de acero, y en cuyo extremo se
coloca un vaso colector (figura 15-13).
(Imagen: J. Morrison)

En resumen, los principales factores que se deben considerar para el muestreo deplancton son:
1. Material de la red.
2. Tamaño del poro de la malla.

4. Velocidad del arrastre.
5. Eficiencia de filtración.

3. Profundidad de muestreo.

6. Mecanismos de cierre.

Usualmente, la mayoría de redes son de nylon o de seda y, dependiendo de su
tamaño, pueden ser maniobradas incluso por un solo individuo desde una pangao bote pequeño. Al arrastrar la red por un medio acuático, esta concentra losorganismos planctónicos que se encuentran en el agua que pasan por ella. Los
diversos grupos funcionales del plancton, como el fitoplancton y el zooplancton,
difieren principalmente en tamaño promedio, por lo que es necesario distintos
tamaños de poro de malla para capturar distintos tipos de organismos. Además,
los organismos pueden encontrarse distribuidos en parches en la superficie o acierta profundidad dentro de la columna de agua debido a factores ambientales,o incluso migrar verticalmente a diario o en distintos meses del año, en respuesta
a la luz o como parte de su ciclo de vida. Esto debe tomarse en consideraciónpara definir la metodología de muestreo, que puede incluir arrastres horizontales apocos metros de la superficie y/o a distintas profundidades, o arrastres verticales
para muestrear toda la columna de agua.

(Imagen: G. Fledman)

Figura 15-13: (A) Medidor de flujo
instalado en la boca de una redde plancton; (B) Red cónica dezooplancton con malla de 335um o
100um; (C) Red cónica de fitoplancton
con malla de 20um.

Figura 15-14: (A) Red de bongo en lasuperficie (B) Red de neuston, utilizada
para colectar organismos que flotan enla superficie o directamente bajo ella,como algunos tipos de larvas de peces ymedusas.

La cantidad o volumen de agua que la red filtra depende del tamaño (área) de laboca de la red, de la velocidad y de la duración del arrastre. Durante los arrastresse utiliza una velocidad promedio de entre 2 y 3 nudos (aproximadamente 1-1.5
metros por segundo), la cual se considera apropiada para evitar que los organismos
escapen de la red o se colecten ejemplares en mal estado. El volumen filtrado(m3) se calcula, por tanto, multiplicando el área (m2) de la boca de la red por lavelocidad (m/s) y por la duración (s) del arrastre. Debido a los varios factores que
pueden afectar la eficiencia de filtración, es recomendable el uso de un flujómetro ocaudalímetro (figura 15-13A) para calcular con mayor exactitud el volumen de agua
filtrada por la red. El caudalímetro usualmente reporta el número de revoluciones(giros de las aspas), el cual se traduce en la distancia recorrida durante el arrastre,utilizando el parámetro de conversión propio de cada instrumento. En este caso, el
volumen filtrado se calcula multiplicando la distancia obtenida con el caudalímetro
por el área de la boca de red. Los resultados del arrastre pueden expresarse como
captura por unidad de volumen:
Captura por unidad de volumen =(Plancton capturado)(Volumen filtrado (m3)

Donde el plancton capturado puede expresarse en términos de biomasa y/oabundancia. La biomasa se puede calcular por métodos volumétricos por mediode la sedimentación de partículas o desplazamiento de líquidos, o por medios
gravimétricos como peso húmedo, seco y peso libre de cenizas. El volumen delplancton capturado se expresa en mililitros (ml); la biomasa se reporta en unidades
de gramos (g) o miligramos (mg) y puede referirse a peso húmedo o peso seco, librede cenizas; mientras que la abundancia se expresa en número de individuos (ind).
En el caso de arrastres verticales u oblicuos, los resultados también pueden
expresarse como captura por área:Captura por unidad de área =(Captura por unidad de volumen)(Profundidad máxima del arrastre (m)Expresado en unidades de ml/m2, g/m2, mg/m2 o ind/m2, según corresponda.
Además de la red cónica comúnmente utilizada, existen otros tipos de redes deplancton que se pueden utilizar. Las redes bongo (figura 15-14A y 15-15) son
una adaptación de dos redes cónicas unidas por una barra entre sus bocas, dedonde se conecta el cable o soga para el arrastre. Este tipo de redes minimiza
interferencias en la boca de la red y obtiene dos muestras simultáneas, mejorando
la efectividad del arrastre. Las redes de neuston son redes cuadrangulares que seusan con flotadores y aletas laterales para mantenerlas parcialmente fuera delagua (figura 15-14B). Además, existen redes con mecanismos de cierre, las cuales
son utilizadas 'en cadena' y operadas desde buques de investigación para ejecutar
muestreos estratificados (a varias profundidades) en la columna de agua, como en
el diseño del instrumento CPR (Continuous Plankton Recorder).

Edición por Stuart Banks 111

También se pueden utilizar bombas de succión de agua para su posterior filtrado
secuencial por los distintos tamaños del poro de la malla. Este método puede permitirla medición de otros parámetros físico-químicos en la misma muestra de agua. Su
principal ventaja es la medición precisa del volumen de agua filtrada, sin embargo,presenta gran evasión de los organismos y dificultad para muestrear estratos profundos.
Las muestras de agua colectadas en botellas también se pueden emplear paraanalizar concentraciones de microplancton y nanoplancton y para determinar laconcentración de clorofila. Las botellas más comunes son las de Nansen, Niskin y
Van Dorn, las cuales pueden ser empleadas individualmente en secuencia a varias
profundidades, o instaladas en una roseta multimuestreadora para su apertura
remota desde un buque de investigación.
Otra de las posibilidades para el análisis cualitativo y semicuantitativo de plancton
es el uso de fotografía y video submarino de alta resolución, los cuales permiten
la observación directa de organismos hasta grandes profundidades, el registro deformas frágiles difíciles de capturar intactas, y la apreciación rápida de toda lacolumna de agua.

Figura 15-15: La red de bongo también
puede ser manejada por buzos en
rastreos submarinos al nivel decomunidades bentónicos(imagen grupo Witman).

El muestreo durante los cruceros
de monitoreo ecológico
Los muestreos de plancton efectuados en la Fundación Charles Darwin datan
desde marzo del 2004. La metodología empleada varía según el tipo de arrastre.
Los muestreos superficiales colectan información sobre la abundancia ycomposición del plancton en el primer metro de agua bajo la superficie, mientras
que los arrastres verticales y/u oblicuos colectan información sobre todo de lacolumna de agua.
Para efectuar muestreos de zooplancton, la red utilizada en el monitoreo ecológico
es una red tipo CalCoFi (California Cooperative Fisheries) de forma cónica, con 50
cm de diámetro en la boca y 333 micras (μm) de tamaño de poro de la malla. En
los muestreos costeros o en zonas interiores se emplea una red tasco de forma
cónica con 335 micras de poro en la malla y 25 cm de diámetro en la boca.
Las colectas de plancton se efectúan mediante arrastres superficiales en los que
desde la embarcación se lanza la red haciendo que esta avance lentamente hasta
que la red quede extendida totalmente. A la red se le añade un flotador mediante
112 Manual de Monitoreo Submarealuna soga, de forma que exista aproximadamente 1 m de distancia entre la bocade la red y el flotador. En la boca de la red se incorpora un flujómetro (instrumento
con forma de cohete, que al final del cuerpo tiene una hélice que registra lasrevoluciones generadas por efecto del flujo del agua). Conforme avanza laembarcación, el agua y los organismos entran por la boca. Los organismos quedan
retenidos en el vaso colector y en la malla, mientras que el agua escapa por losporos de la malla. Cada muestreo debe registrarse en el GPS, el cual también
puede servir de guía al panguero para no superar los 2.5 nudos de velocidad en
un rumbo recto. Los arrastres horizontales tienen una duración estándar de 10
minutos.
Las muestras de plancton deben ser guardadas en frascos de 250 - 500 ml decapacidad, con boca ancha y lisa. Para evitar perder organismos por depredación
dentro del envase, la muestra debe ser fijada en campo y almacenada entetraborato de sodio (Na2B4O7.10H2O). También pueden usarse otros fijadoresa base de yodo y potasio, o lugol. Este último es generalmente utilizado con
fitoplancton puesto que colorea las estructuras.

Aunque las colectas de plancton tardan apenas minutos, el análisis de las muestras puede
llevar incluso años debido a la diversidad de los organismos, y se requiere de diferentes
profesionales para lograr las identificaciones precisas.
Se debe procurar que la muestras sean almacenadas en zonas oscuras paramantener el color, y a una temperatura entre los 5º - 20º C. Aunque las colectas
de plancton tardan apenas minutos, el análisis de las muestras puede llevar
incluso años debido a la diversidad de los organismos, y se requiere de diferentes
profesionales para lograr las identificaciones precisas (figura 15-16).
Figura 15-16: Ejemplos de zooplancton registrados en el laboratorio. Allí se requiere bastante trabajo para contar y separar las muestras deplancton para su grabación e identificación. Las muestras pueden quedar guardadas en el corto plazo. Sin embargo, es importante mantener unbalance entre la colección de muestras tomadas en el campo y la capacidad del personal para trabajar en la microscopia y su posterior análisis.
De izquierda a derecha: un amphipod Phronina, un pteropod, Phialopsis, un calanoid copepodo, un quetognato y un eufasido.

En muchos casos, un análisis del total de muestras colectadas es imposible entérminos de tiempo y personal, por lo que se obtienen alícuotas de cada muestra.
Para ello se emplea un separador de Folson en el que se vacían las muestras
diluidas a un mismo volumen después de la extracción de los organismos ypartículas superiores a 10 mm. En el separador se homogeniza la muestra diluida
y se obtienen dos alícuotas de igual volumen. El procedimiento puede repetirse de
ser necesaria una alícuota de menor volumen. La identificación del zooplancton serealiza visualmente, colocando la muestra en un microscopio estereoscópico. Es
conveniente utilizar un contador manual múltiple con etiquetas para los distintos
tipos de organismos o grupos de organismos a identificar. Para la identificación defitoplancton se emplea un microscopio electrónico.

Edición por Stuart Banks 113

16

Ejemplos de submarinos remotos
utilizados para explorar profundidades dela RMG >40m con límites de profundidadde 120 m, 200 m y 2.5 km(Imagen: S. Banks)

Sistema hidrotermal 'Las Iguanas' a 1680 m de profundidad, 50 km NO de Darwin. (Imagen: cortesía de Vulcan Inc.)

Técnicasde monitoreo
remoto submarino
El monitoreo remoto es un método que permite describir comunidades bénticas
asociadas a fondos marinos de forma rápida y efectiva (Preskitt, et al., 2004) con
ayuda de registros visuales de fotografía y/o video. Aunque puede ser demandanteen términos de tecnología, los vehículos remotos no tienen las limitaciones
de tiempo y/o de profundidad que el buceo Scuba exige. Facilita la colecciónde información visual que puede ser comparable entre años, sitios y grupos deinvestigación, evitando posibles sesgos o errores de observación humano, y es
relativamente rápido en aguas someras o profundas. No obstante, es importanterecordar que estos métodos también requieren de mucha inversión y seguimiento
en el post-procesamiento de los videos e imágenes.

Cuadrantes fotográficos en el
submareal <40m
El método más rápido y eficiente en el campo para obtener datos para determinar elporcentaje de cobertura es el muestreo con cuadrantes fotográficos fijos (Foster, etal., 1991). Los patrones de diversidad de especies se determinan al tomar fotos decuadrantes normalmente de 0.25m² a lo largo de un transecto permanente.

(Imagen: M. Vera)(Imagen: M. Vera)

114 Manual de Monitoreo Submareal

Para esto, se emplea un equipo fotográfico compuesto por una cámara Nikon D80,
un lente Fisheye 10,5 mm f/2.8G ED AF DX - Nikkor autofocus lens, un housing
Ikelite y un Puerto Ikelite Domo de 8”. El equipo fotográfico se coloca sobre un
marco de aluminio (figura 16-1) que mantiene el domo a una distancia determinada
con respecto al sustrato de aproximadamente 30 cm. Es importante considerar larelación entre el tipo de lente, la distancia entre el lente y el sustrato y la superficie quese pretende fotografiar para que la imagen tenga una resolución lo suficientementebuena como para identificar organismos mayores a 2 o 3 mm. (Foster, et al., 1991;
Witman, 1985). En metodologías recientes se han utilizado camaras digitales por lafacilidad para manipular las imágenes, corregir distorsiones periféricas (figura 162) y usar programas multiespectrales que pueden apoyar en el análisis simultáneo
de una gran cantidad de imágenes con un respaldo estadístico (MultiSpec, Purdue
University, IL/ CPCE, Nova University) (figura 16-3 y 16-4).

Figura 16-1: La construcción de un fotocuadrante depende mucho del tipo de lente para una captura con una resolución alta que facilite laidentificación de las imágenes.

Los cuadrantes fotográficos se toman de forma sistemática, a intervalos
determinados a lo largo de un transecto fijo sobre el fondo marino (normalmentecada 5 m o 10 m). El número de cuadrantes fotográficos es establecido con baseen un balance entre el tiempo de inmersión, el largo del transecto y la curva desaturación de especies.
El análisis de la información se realiza después de la inmersión. Una vez revelado
el film, las imágenes se proyectan en una pantalla con los extremos de la imagen
sobre un marco rectangular dividido en un número determinado de cuadrículas.
Finalmente, el porcentaje de cobertura se determina, al igual que en el campo, alcontar el tipo de organismo que coincide con la intersección de cada cuadrícula
(Foster, et al., 1991, Witman, 1985) (figura 16-3). Adicionalmente, se identificantodos los organismos observados, clasificándolos como especies o dentro degrupos funcionales de acuerdo con el nivel de conocimiento taxonómico.
A diferencia de los cuadrantes monitoreados in situ, el análisis de los cuadrantes
fotográficos no presentan limitación de tiempo para la identificación de las especieso para el análisis de cobertura o abundancia. Sin embargo, este método no es
eficiente para determinar la abundancia de organismos sobre fondos cubiertos poralgas foliosas densas que tapan a otros organismos (Foster, et al., 1991; Witman,1985) y que, en muchos casos, subestima la megafauna ampliamente dispersa(Smith & Witman, 1999).

Figura 16-2: Una cámara con lente Fisheye también tiene aplicaciones para caracterizar hábitats, pero es necesario corregir el efecto dedistorsión (imágenes: D. Ruiz).

Edición por Stuart Banks 115

Figura 16-3: (A) Ejemplo de un cuadrante fotográfico con proyección sobre una cuadrícula para el análisis y la estimación de la abundancia deespecie y (B) el muestreo con puntos al azar utilizando el programa CPCE.

Figura 16-4: Software para la manipulación de imágenes puede corregir la distorsión causada por loslentes de las cámaras con la pérdida de nitidez en los bordes.

Videotransectos
Al igual que con los cuadrantes fotográficos, los videotransectos pueden utilizarse
para cuantificar los organismos asociados a los fondos rocosos e incluso
determinar porcentajes de cobertura de organismos sésiles sobre el sustrato.
Al extraer imágenes independientes del video, estas se pueden analizar con la
misma metodología utilizada en el análisis de los cuadrantes fotográficos, pero es
importante considerar la resolución del video.
Lo más recomendable es esplazarse lentamente durante la grabación del transecto.
Una velocidad de 10 cm/segundo permite maximizar el enfoque y la resolución delvideo. Pero si se requiere mayor seguridad para que la cámara tenga tiempo para
ajustar el foco y la exposición, se recomienda una velocidad de 10 cm / 3 segundos(Witman, et al, 1999). Más indicaciones sobre sistemas de BRUV y DOV con uso deláseres para la calibración de distancias se encuentran descritas en la sección 11.
También es posible mejorar la resolución del video cuando se realiza la filiación deltransecto a una distancia de 50 cm entre el lente y el substrato, permitiendo identificar
organismos que midan 0,5 cm (Witman, et al, 1999). Una alternativa bastante
popular desde el 2013 es la serie de cámaras de Hero GoPro con resoluciones dehasta 12MP. Al grabar directamente en HD de 4K se tiene la ventaja adicional de una
buena captura de imágenes que pueden extraerse del video.

116 Manual de Monitoreo Submareal

Otras consideraciones•Antes de realizar los cuadrantes fotográficos, se debe fijar un transecto permanenteque permitirá realizar réplicas de muestreo en el mismo sitio a lo largo del tiempo.
• Colocar la base de la estructura de aluminio siempre en el mismo punto dereferencia para fotografiar el cuadrante.
• En caso de haber sedimento sobre el fondo marino, tratar de removerlo agitando
suavemente la palma de las manos sobre el área a fotografiar. Esto permitirá un
mejor reconocimiento de las especies presentes.
• Tener en cuenta que si se utiliza una cámara digital se debe reducir la distorsión
periférica de las imágenes antes de analizarla.
• Contar con toda la información taxonómica disponible para la identificación delas especies o grupos funcionales.

En búsqueda de las profundidades:
El uso de tecnológicas de vehículos
de operación remota (VORs)
A pesar de existir más de 15 años de investigación que ha catalogado más de 3500
especies marinas, nuestro entendimiento de la biodiversidad marina de Galápagos
está todavía restringido por el costo monetario y la tecnología disponible albuceo Scuba, a profundidades <30m dentro de la zona costera, dejando la granmayoría de hábitats marinos de aguas profundas y su diversidad inexplorados.
La investigación en esta zona de aguas profundas, implica un gran potencial paranuevos descubrimientos en el área restante (>99%) de la RMG. De esas pocas
expediciones internacionales que se han aventurado a esas zonas, se tiene elsentimiento general de que “a mayor profundidad, menor conocimiento”, lo cualestablece tanto un reto tecnológico como una nueva frontera de exploración denuestros 'espacios internos'. Se conoce más de la superficie de Marte que denuestros océanos.
Los hábitats de aguas profundas y superficies costeras están interconectados,y muchas especies de importancia para la biodiversidad, pesquerías y manejo
turístico tienen distribuciones espaciales verticales significativas. En respuesta
a la falta de información de las zonas de aguas profundas, cámaras de video yvehículos de operación remota (VOR) empezaron en el 2004 a sumergirse en elmundo desconocido bajo las olas. Estas cámaras simples, que alcanzan los 100
m, proveyeron los primeros vistazos de especies que se creían extintas (ej. lápices
marinos Ptilosarcus sp., Cavernulina sp. [Hickman, 2008]). Comportamientos
alimenticios de lobos marinos y tortugas marinas también fueron observados. Se
registraron bosques de coral negro donde nunca antes se los había visto, gruesas
alfombras anóxicas de bacterias fueron registradas en cráteres sumergidos,
se vieron corales de aguas profundas y peces, y se avistaron invertebrados en
cada inmersión. Recientemente, en el 2007, el alga 'kelp' de aguas profundas(Eisenia galapagensis), que se pensaba solo se encontraba a mayores latitudes,
fue descubierta en Fernandina a una profundidad de 80 m, un descubrimiento
que ha causado mucha discusión en la comunidad científica internacional y que
cambió nuestro entendimiento de la distribución global de esta importante especie
constructora de hábitats.
Hasta la fecha, los pocos esfuerzos con VORs han sido, sobre todo, eventos deoportunidad más que de planificación que, sin embargo, han dado lugar al registro
exitoso de especies nuevas o raras.
A mayor profundidad, el costo operacional incrementa dramáticamente. Una delas misiones científicas internacionales más publicitadas en los últimos 30 años
utilizó el submarino tripulado S/V Alvin, el cual fue el primero en documentar elcentro de desplazamiento volcánico entre las placas tectónicas de Galápagos. El

En colaboración con operaciones
especialistas de investigación y exploración
en aguas profundas, ha sido posible avanzar
estudios preliminares de línea base sobre
los sistemas escondidos y poco entendidosde la RMG (40 m a 1000 m de profundidad).
(Triton & Deep Rover II submergibles con
soporte de Dalio Ocean Initiative).

Edición por Stuart Banks 117

Figura 16-5: Imágenes de alta definición (cortesía de la operación del M/V Octopus) colectadas por el vehículo remoto de exploración (ROV) a
1500 m en el año 2005. Arriba, de izquierda a derecha: Apristurus sp.; Actinoscyphia sp.; Gorgona, oxiuros y cangrejo no identificados. Abajo, deizquierda a derecha: Bathypterois sp., Dibranchus erinaceus, crinoideos (lirio de mar) y cangrejo no identificado.

descubrimiento de fumarolas efímeras de humo negro, con una gran abundancia devida marina quimiosintética única en las que habitan en ventoleras sobrecalentadas
a profundidades mayores a 3000 m, marcó una era en nuestro entendimiento delos sistemas oceánicos de aguas profundas. Esto también proveyó información
sobre el origen de la vida en la tierra lejos de las aguas superficiales con luz
solar. La expedición del Instituto Harbour Branch en 1995, con el submarino S/VJohnson-Sealink por la Academia de Ciencias de California, también documentó
peces e invertebrados a 1000 m, registrando especies que nunca antes se habían
documentado en Galápagos. En el 2005, la operación del M/V Octopus con laparticipación de un científico de la FCD, proveyó imágenes de su VOR a 1500 m deprofundidad, que resultó en los primeros registros de varias especies de tiburonesde aguas profundas de Galápagos (Bythaelurus Sp. y Apristurus Sp.), crinoideos,equinodermos y peces de aguas profundas (figura 16-5).
En el 2010, la llegada de la operación M/V Octopus resultó en una oportunidad
para realizar varias inmersiones someras, de hasta 150 m, y profundas, de hasta
casi 2000 m. Entre la DPNG y la FCD, con la colaboración externa del grupo deexploración profundo de Woods Hole, fue posible ubicar y documentar bentos
hidrotermales en el sitio 'Iguanas' en el plano profundo a 50 km al noreste de Darwin,a 1670 m de profundidad. Esas chimeneas formadas por depósitos volcánicos oblack smokers mantienen comunidades biológicas poco documentadas de origen
quimiosintético (figura 16-6).

Figura 16-6: Imagen de alta
definición de comunidades
hidrotermales en el sitio 'Iguanas',
ubicado en el Dorsal de Galápagos(Galápagos Spreading Centre),
tomados por un vehículo remoto de
exploración (ROV) a 1670 m en el
año 2010. (Cortesía de la operación
Vulcan Inc. del M/V Octopus).

118 Manual de Monitoreo Submareal

A pesar del alcance de estos descubrimientos; los altos costos, la embarcación deapoyo y la experiencia necesaria para operar estos submarinos de investigación
son altamente prohibitivos para que el PNG y la FCD puedan incrementar la
exploración de los hábitats de aguas profundas en Galápagos por su propia cuenta(más que los VORs pequeños de la FCD y la operación de Lindblad). Sin embargo,cada año se presentan varias oportunidades para colaborar con grupos científicos
internacionales externos, aunque se requiera de coordinación de permisos yobjetivos y de buena voluntad por parte de las instituciones involucradas.
En caso de que en el futuro surjan otras oportunidades para inmersiones hasta los2000 m, a continuación, algunas recomendaciones. Los sitios propuestos fueron
elegidos con base en su relevancia para la línea base de las aguas profundas
para la caracterización de ese hábitat, y por temas del ordenamiento de usos en
los espacios abiertos y profundos de la RMG. Según la dinámica del crucero, se
adaptará el muestreo, en lo posible, a lo siguiente, utilizando la batimetría más
actualizada posible para planificar las inmersiones en cada zona (figura 16-7):

Figura 16-7: Zonas de interés por
inmersiones exploratorios con VOR
hasta 2500 m de profundidad. Letras
corresponden a la lista de los sitios
propuestos (arriba). El símbolo * indica elbajo somero entre islotes Daphne Menor y
Mayor, el cual es un buen sitio para probarla tecnología sumergible cerca a lasfacilidades portuarios de Baltra.

a. Por lo menos uno de los montes submarinos oceánicos al este de San Cristóbal.
Se representan ejemplos de islas hundidas y son zonas de alta importancia
por su productividad pesquera de pesca blanca y por la modalidad de turismode pesca vivencial.
b. El bajo insular llamado 'Bajo Wittmer' al este de Floreana.
c. Un perfil vertical (2000 m - 800 m) en las faldas del monte submarino "demesa" (de 50 km de extensión), ubicado sur de Marchena (figura 16-8).
d. La zona noroeste de fisura en Fernandina.
e. La pendiente de Bahía Tiburón / el derrumbe al este de la Isla Wolf.
f. La pared vertical dentro el Canal Simón Bolivar, oeste de Isabela, norte deCaleta Tagus.
g. La caída vertical cerca de Cabo Marshall, noroeste de Isabela.
El uso de un VOR representa un método muy innovador pero difícil de conseguir paraalcanzar esas profundidades para su exploración, algo que normalmente implica
una operación extremamente difícil de organizar y financiar (imagen realizada
con software Fledermaus). Afortunadamente, varias operaciones especializadas
con tecnología sumergible han coordinado sus expediciones a través de la DPNG
durante los últimos 10 años (ej. M/V Octopus, R/V Alucia, R/V Nautilus, R/V Argo) yla documentación visual e inventario de comunidades profundas está mejorando.

Edición por Stuart Banks 119

Figura 16-8: Un monte submarino de
50 km de largo ubicado al sur de la
Isla Marchena tiene una batimetría de2000 m en su base y de 800 m sobre su
plataforma. La tecnología sumergible
provee una oportunidad única para
entender mejor la ecológica asociada con
formaciones geológicos profundas.

Preguntas asociadas de la Investigación:
1. Se han observado cambios dramáticos en la flora y fauna de la Isla del Coco.
Estos cambios se observaron aproximadamente a 50 m con una variación
sobre los 13° C en la temperatura (Cortés & Blum, 2008). ¿Es este el caso en
Galápagos?, ¿Están estos cambios ligados a una mezcla de masas de agua enla termoclina? ¿Cómo afectaría esto la migración vertical de las especies desdeaguas más profundas hacia las zonas costeras?, ¿El oleaje interno durante losciclos ENOS afecta estos límites?
2. ¿Hay alguna evidencia de especies consideradas como recursos costeros,
semejantes a langostas, pepinos de mar, bacalao, camotillo, etc. a mayores
profundidades?, ¿Cuáles son sus tallas de distribución y potenciales
contribuciones o implicaciones para el manejo de la zona costera?
3. ¿Cuáles son las distribuciones verticales de las grandes migraciones de especies importantes para el turismo y la función del ecosistema (ej. tiburones,
rayas, corales, erizos y macroalgas) a mayores profundidades?, y ¿Cómo el gradiente biofísico en la columna de agua afecta su distribución?
4. ¿Están consideradas en la Lista Roja de UICN, especies raras o nuevas aún
no documentadas en las aguas profundas de Galápagos? Trabajos recientes
usaron técnicas sumergibles en la Isla del Coco, Costa Rica, y permitieron
descubrir fauna que se creía perdida para el Trópico del Pacífico Ecuatorial, ¿eseste también el caso de Galápagos?
5. ¿Hay diferencias entre las especies de aguas profundas de las regiones frías(zonas de afloramiento), regiones cálidas subtropicales y regiones centrales demezcla, como lo observado en zonas costeras poco profundas?
6. ¿Cuáles son las extensiones de profundidad de los bosques de macroalgas
endémicas de Galápagos, recientemente descubiertas, y de los hábitats
productivos de macroalgas registrados en el oeste del archipiélago (Graham
et al 2007)?

Ejemplo de colecciones de biota durante muestreo geológico en el crucero oceanográfico NSF-Flamingo (MV/Melville 2010). (Imagen: S. Banks)

120 Manual de Monitoreo Submareal

Preparando algas en el campo. (Imagen: S.Banks)

Colección, fijación,
preservación yetiquetado de especies
La colección y estudio de las muestras, así como los equipos adecuados para tal
fin, constituyen parte fundamental de la investigación de campo. Estos elementos
orientan el proceso que debe seguir el investigador en lo relacionado con el método
de preservación de las muestras.

17

Colecciones de especímenes en el campo están
identificados en el laboratorio marino para queluego entren a las colecciones nacionales.

Al extraer especímenes con el fin de preservarlos y confirmar su especie, el
investigador debe previamente revisar las guías de identificación de especies que
se encuentran a bordo, para evitar sacrificar organismos innecesariamente. Es
recomendable conocer el tipo de estudio que se efectuará con el tipo de espécimen
colectado, ya sea morfología, embriología, anatomía, entre otros.
Generalmente, las muestras colectadas son transportadas al laboratorio para seranalizadas con la ayuda de los equipos adecuados. Se deben etiquetar todas lasmuestras extraídas por duplicado y con la mayor cantidad de información relevante(sección 18; ficha de colección). Una etiqueta debe ir adherida al recipiente y otra
debe ir en su interior.
Los métodos más comunes de preservación de las muestras son la refrigeración
y el congelamiento. El primer método es muy fácil ya que la muestra no requiere
tratamiento y puede permanecer por largo tiempo en una nevera a una temperaturade 4º C. El segundo método tiene dos variantes, las cuales requieren de una
metodología un poco más compleja. La primera variante emplea hielo seco, cuya
disponibilidad es limitada en las islas. La segunda variante es logísticamente más
recomendable y utiliza hielo húmedo, por lo cual se deben guardar las muestras enrecipientes a prueba de agua.

(Imagen: S. Banks)(Imagen: N. Tirado)

Por lo general, los viajes son muy largos y la embarcación no dispone delespacio necesario para aplicar estos métodos de preservación in situ, por lo que
comúnmente se fija la muestra con formalina neutralizada y/o alcohol.

Peces
Inicialmente, se deben fijar en formalina neutralizada con una concentracióndel 10%. En caso de requerirse estudios de tipo genético, molecular o afines, las

Edición por Stuart Banks 121

muestras se preservan en alcohol etílico al 90 - 96% (Espinosa-Pérez 2003) puesto
que de esta forma es posible recuperar el material genético de los tejidos.
Luego de registrar las características más sobresalientes y obtener fotografías delos especímenes en estado fresco, se fijan las muestras con formalina. Una vez
en el laboratorio se guardan las muestras en la colección con alcohol etílico al
70% o en isopropílico 40 - 50% (Anderson, 1965 & Knudsen, 1972 en Wobeser,1987), y se reemplazan las etiquetas de colecta con las de colección. Entonces,
se debe registrar el número correspondiente al catálogo de muestras del área deinvestigación y conservación marina.

Invertebrados

Raya marmoleada Taeniura meyeni(Imagen: R. Gallardo)

Dólar de arena, Encope sp.

(Imagen: M. Vera)

La recolección de invertebrados es manual, sin utilizar ningún tipo de trampa ybasados en la necesidad de identificación. Es decir, estos organismos solo deben
colectarse en caso de sospechar que se trata de una especie no identificada opoco avistada. Para la recolección de larvas se deben efectuar arrastres con redes
grandes de plancton, durante 10 minutos, a una velocidad de entre 2 y 3 nudos. Se
debe tener en cuenta que estos organismos presentan exoesqueleto calcáreo, el
cual puede ser destruido por altas concentraciones de formalina no neutralizada.
En el caso de los mesogastrópodos, se identifican a bordo, descartando conchas
habitadas por cangrejos ermitaños. En caso de no ser posible su identificación en elcampo, son transportados al laboratorio en frascos o bolsas herméticas de acuerdo
al tamaño y a la cantidad de organismos. En caso de tratarse de bolsas, se debe
evitar dejar burbujas de aire. Antes de ingresar la colección de forma definitiva, sedebe secar los organismos para evitar que se llenen de hongos por la humedad.
Los ofistobránquios deben colocarse por un par de horas en agua de mar con
cloruro de magnesio para que sus tejidos se relajen. Cuando los organismos están
totalmente relajados o muertos recientemente –lo cual se determina por la falta derespuesta al presionar su rinóforos– se pasan por formalina al 4% durante 10 horasy, posteriormente se conservan en alcohol al 70%. Si el alcohol cambia de color
debe ser reemplazado hasta que pueda verse a través del recipiente transparenteen el que se encuentra.
Al colectar gasterópodos y bivalvos se debe considerar su tamaño. Los organismos
inferiores a 4 cm se deben colocar inmediatamente en alcohol al 95% y dejarlos por
unos 5 días, cambiando el alcohol. Luego se pasan por la secadora por al menos
5 horas para evitar malos olores. En caso de organismos grandes, la literatura
recomienda hervirlos para extraer el cuerpo cuando la concha aún está caliente, yse recomienda usar una pinza curva para facilitar el trabajo. Si se desea conservar
el cuerpo, se deben colocar los especímenes en agua de mar con mentol para
relajar los tejidos. Una vez comprobada su muerte, los organismos se transfieren
directamente a alcohol al 70% para preservalos.
Para sacrificar crustáceos se puede escoger entre narcotizarlos con cristales dementol o con gotas de cloroformo. Luego se preservan en formalina neutralizada
al 6-10% de concentración.

Organismos sésiles
Las plantas vasculares acuáticas se fijan en AFA (solución que contiene alcohol,
formalina y ácido acético). Otra de las posibilidades es fijar con formalina al 3-5%
en agua de mar. Es preferible fijarlas durante la noche y guardarlas fuera del alcancede la luz para evitar que se blanqueen. Los especímenes carnosos se deben limpiar
de residuos de arena, conchas pequeñas y otros, y fijarse en formalina. Luego se
empapan en una solución de glicerina al 40% con 3% de formalina, y se secan
en contenedores pequeños de cartón con una fuente de calor que puede ser una
bombilla. Finalmente, son pegados en cartulina de herbario y etiquetados según
corresponda.

122 Manual de Monitoreo Submareal

Tabla 16-1: Tratamientos típicos para la anestesia, fijación y preservación de invertebrados.

Taxa general

Taxa específica

Agenterelajante

Porifera-n/aAnthozoa

MgCl2 (c. 7%)

Hydrozoa

MgCl2 (c. 7%)

Bryozoa-

MgCl2 (c. 7%)

Annelida

Polychaeta,
Oligochaeta yHirudinea
Decapoda y otros
crustacea más
grandesCnidaria

Crustacea

Mollusca

Echinodermata

Urochordata

Solución
final depreservación

Solución para fijación

Solución de lavar

10% formalin con aguade mar y buffer demethenamine
6-10% formalin con
buffer de fosfato
4% formalin con buffer
de fosfato
5% formalin con buffer
de fosfato70-80% EtOH
cambia dos
veces
30%, 50%, 70%
EtOH30%, 50%, 70%
EtOH30%, 50%, 70%
EtOH

MgCl2 (c. 7%)

10% formalin en aguade mar con buffer defosfato30%, 50%, 70%
EtOH

70% EtOH

MgCl2 (c. 7%)
o aciete declavos

5-10% formalin en aguade mar con buffer defosfato o 75% EtOH

50%, 70% EtOH

70% EtOH

Ostracoda,
Copepoda,
Branchiopoda yAmphopoda

MgCl2 (c. 7%)

4-10% formalin enagua de mar con buffer
de fosfato o 70% EtOH
(solo Ostracoda)-

70% EtOH

Bivalvia

MgCl2 (c. 7%)

Gastropoda

MgCl2 (c. 7%)

Polyplacophora y
Monoplacophora

MgCl2 (c. 7%)

10% formalin con buffer
de fosfato o 70% EtOH
Formalin de 10% con
buffer de fosfato
Formalin de 10% con
buffer de fosfato

30%, 50%, 70%
EtOH30%, 50%, 70%
EtOH30%, 50%, 70%
EtOH

Ophuiroidea

MgCl2 (c. 7%)

70-75% EtOH

n/a

70% EtOH

Holothuroidea,
Asteriodea y
Echinoidea

MgCl2 (c. 7%)

70-75% EtOH

n/a

70% EtOH

Crinoidea

MgCl2 (c. 7%)-

70% EtOH

Ascidiacea

MgCl2 (c. 7%)

n/a

70% EtOH

90% EtOH (fija losbrazos hacia abajo)
Formalin de 10% con
buffer de fosfato70-80% EtOH
70% EtOH
70% EtOH
70% EtOH

70% EtOH
70% EtOH
70% EtOH

Los especímenes de algas que no presentan cuerpos carnosos se deben extendersobre una cartulina y cubrirse con papel encerado, intercalado con papel secante (opapel periódico, en su defecto). Cuando se tiene una agrupación de especímenes,
se atan bien con correas y se someten a una fuente de calor, de tal modo que elaire caliente circule hacia arriba.
Los reactivos para el tratamiento del resto de grupos, como hidrozoos, poliquetos,
esponjas y anémonas, se detallan en la tabla 16-1. Es importante recordar que si
se desea efectuar estudios genéticos o moleculares, los especímenes no deben
ser tratados con formalina; en este caso es recomendable utilizar alcohol al 95%
o etanol al 50%.
(Imágen: N.Tirado)

Edición por Stuart Banks 123

18“Dentro de la colección marina
contamos con 7264 registros, el 38%
muestras secas, 61% muestras en
alcohol etílico al 75%, y 1% en slides"(Crustáceos, Moluscos,
Equinodermos, Cnidarios, Peces,
Sedimentos, Otolitos y Plancton).
Natalia Tirado-Sánchez
y Rosita Calderón
Curadores de las colecciones
marinas. 2008 - 2014
(Informe Sept. 2013)

Las colecciones
marinasUn inventario actualizado de la biodiversidad
y su distribución en la RMG
Con los insumos y aclaraciones de un red de especialistas en taxonomía, el registrode especies conocidas en la RMG ha aumentado a más de 3500 con la adición degrupos taxonómicos pocos estudiados (tabla 18-1).
Nuevas observaciones, fruto de las actividades de monitoreo y proyectos enel campo con recolección de muestras, quedan vinculadas con los datos de loscensos submareales con un código único que se identifica en las colecciones
marinas físicamente. Tras el proceso de identificación –lo cual a veces puede tomaraños– los holotipos de especímenes se ingresan a la colección bajo condiciones
controladas en el repositorio de muestras. Tendrán valor como referencias
comparativas morfológicas, moleculares y genéticas, pero también permanecena bajo la custodia de las Colecciones Nacionales del Estado Ecuatoriano como
constancia del patrimonio natural de la región.
En algunos casos, estos quedan como evidencia de los únicos recuerdos tangibles
de probables extinciones y de la fragilidad de ciertas especies. En otros, llama la
atención el sesgo de investigación o protección brindado en ciertos grupos encomparación con otros. Es importante destacar que tales recolecciones y búsquedas
dirigidas en el campo para especies poco comunes y endémicas ha generado
nueva información que ha llamado la atención de su vulnerabilidad. Procesos con
grupos de expertos para la Lista Roja de la IUCN para especies formadoras dehábitats como algas y corales han sido clave para establecer prioridades para laconservación (Carpenter et al 2008).
Desde el 2008 las Species check-lists han sido publicadas en línea como listas
revisadas de la biodiversidad por grupos de taxónomos y están regularmente
actualizadas por un proceso interno del FCD-Datazone que cuenta con una serie
de chequeos con expertos. Está planificado seguir el camino para documentar
fotografías en línea para cada espécimen, recibir insumos de expertos a través deforos virtuales y usar una herramienta en línea –que ya existen– para visualizar lossitios de las colecciones históricas.

124 Manual de Monitoreo Submareal

Tabla 18-1: Número de especies marinas
en los principales grupos taxonómicos deGalápagos, después de Hickman (2009),
ampliado y actualizado para incluir
grupos adicionales hasta el 2013. Se
omiten las especies visitantes transitorias
y poco frecuentes.

Colecciones de algas marinas
son mantenidas en el Herbario de la ECCD.

Cada año, el monitoreo submareal ha complementado la colección de ciertos
grupos poco estudiados con mayor énfasis en algas e invertebrados sésiles.
Este último grupo es bastante diverso y hay una falta de resolución taxonómica
en toda la región. No obstante, como formadores de hábitats de criadero y con
un rol productivo clave, tienen importancia como componente funcional en la
estructuración del hábitat bentónico.
Oportunidades de proyectos puntuales sobre dieta, relaciones entre L-W y
comportamientos de especies también han servido para mejorar la metadataecológica asociada. Esta información está resumida en la tabla de especies en laBase Submareal Ecológica en la Base de las Colecciones de la FCD, siempre bajo
revisión cuando llegan nuevas observaciones.

Eisenia Galapaguensis (Imagen: CC-FCD)

Figura 18-1: Ejemplos de las colecciones
marinas incluyendo organismos
secados, preparaciones de partes deorganismos que son diagnósticos para laidentificación (como los otolitos de peces)y organismos preservado en solución dealcohol.

Edición por Stuart Banks 125

Ingreso de especímenes en el museo
Todos los invertebrados colectados en proyectos de investigación del área marina,
de colaboradores científicos o de instituciones con fines científicos que tienen
un permiso de investigación científica otorgado por la DPNG, pueden presentar
especímenes para ser mantenidos en las colecciones. También especímenes
históricos colectados por pescadores o guías de las islas Galápagos pueden ser
donados y depositados si son tramitados por personal de la ECCD o la DPNG.

También especímenes históricos colectados por pescadores o guías de las islas Galápagos
pueden ser donados y depositados si son tramitados por personal de la ECCD o la DPNG.
Cuando los especímenes ya están identificados ingresan a la Base de Datos deColecciones de la FCD donde reciben un número de acceso (accession number)que permitirá hacer su búsqueda más rápida para trabajos posteriores.
Cualquier persona que desee ingresar especímenes al museo debe adjuntar la
información de respaldo en formato electrónico y en la etiqueta (tabla 18-2).
La persona encargada del museo recibirá los organismos secos o en alcohol,
examinará el estado y condición de los especímenes y llenará el formulario en el
cuaderno de ingreso y en la base de datos de ingresos con los datos entregados.
Se sellará la boca de los frascos o se colocará en cajas.
En caso de depósitos anónimos, se ingresará el espécimen después de 3 mesesde haber sido encontrado, si antes no aparece el depositante para reclamarlo.
Las muestras secas, para ser ingresadas al museo, deben estar en cajas curadas,
etiquetadas e identificadas hasta el mayor nivel taxonómico posible.
Cada grupo que se encuentra en las colecciones marinas tiene un formato parasu etiqueta. Esto depende de las necesidades de información de cada grupo. Las
etiquetas son impresas con tinta y en el papel apropiado.
Gelidium Hancockii (Imagen: CC-FCD)

Tabla 18-2: Información requerida
para entregar especímenes
en el museo.

Cada frasco de vidrio que contiene especímenes en solución de alcohol debe estar
etiquetado adecuadamente y lleno con alcohol al 75%. El nivel de alcohol dentro
de los frascos de vidrio debe cubrir totalmente los especímenes o llenarlo en su
totalidad. La boca del frasco debe estar sellada con parafilm, adecuado para evitar
la evaporación.

Información requerida
1Nombre del proyecto: ECOM (Monitorio Ecológico Sub Mareal)

2

Fecha de colección: 02-agosto-20133

Colector (es): Calderón, R.

4
5
6
7
8

Código del colector, si lo tiene: FE02-RC
Localidad: Fernandina, Punta Priscila
Coordenadas: S 00° 45' 8.59"/ W 90° 20 ' 32.65"
Hora: 10:20 a.m.
Profundidad: -1 m

9

Expedición: Zooplancton

10

Métodos de colección: Arrastre horizontal, Scuba

1112

126 Manual de Monitoreo Submareal

Ejemplo

Identificación, si lo sabe: Brachyuro
Tratamientos a los que sometió
a los especímenes antes de Formalina al 5 o 10%, etanol al 75%.
ingresarlos a la colección:

Revisión de los especímenes del museo
Cualquier persona que desee revisar especímenes del museo puede hacerlo previa
autorización del curador o de su asistente. La revisión debe hacerse dentro del museoy siempre acompañado por alguna de las personas a cargo de la colección. Para
examinar los especímenes bajo el microscopio se los puede sacar al laboratorio en
caso de que no exista un sitio adecuado para ello dentro del museo. La manipulaciónde los especímenes se debe hacer con guantes para evitar su contaminación.
Existe un libro de registro de visitantes al museo que debe ser llenado cada vez quese hace uso de las colecciones. Dentro de la colección está totalmente prohibido
fumar, comer o mover de sitio los especímenes. Se debe evitar toser o estornudardelante de los mismos. Tampoco se puede ingresar con maletas, mochilas opaquetes y se debe estar atento de cierta joyería o accesorios que podrían dañar
involuntariamente a los especímenes.

Identificación de especies
El jefe de área de investigación delegará a un miembro del museo que se encargaráde la identificación del espécimen hasta el más bajo nivel taxonómico posible. Paraello, debe constar un recibo numerado con copia y el formulario de identificación,
para ser llenados y devueltos al jefe de área para su firma.
Cuando algún espécimen no pueda identificarse dentro del museo, el jefe de áreapuede solicitar su envío para que sea identificado por especialistas fuera del país.
El director del área autorizará al curador del museo escribir al especialista. Una vez
que exista una respuesta positiva del especialista se efectuará el traslado.
En todos los casos, se respetan los datos de colección y el nombre del colector que
donó los especímenes.
La persona que necesite enviar especímenes a identificar por especialistas externos
debe seguir el mismo procedimiento descrito anteriormente. El interesado escribirá
una carta o email al curador solicitando el envío de especímenes para su identificación
científica. Una vez que es autorizado, entregará al asistente del curador un catálogo
con los datos de colección de los especímenes a enviar; los especímenes deberánestar debidamente montados y etiquetados en un frasco de vidrio con alcohol. El
asistente del curador es la única persona responsable de llenar los formularios
respectivos, de embalar, enviar los especímenes y llevar un registro de estos.

Procedimiento para la obtencióndel permiso de exportación de muestras
El permiso de exportación de muestras es autorizado por la Dirección del ParqueNacional Galápagos (DPNG). Para su obtención se deberá cumplir con el siguiente
procedimiento:• Llenar el formulario de exportación de muestras proporcionado por el asistenteadministrativo de ciencias.
• Entregar el formulario al personal de científicos visitantes, quienes llevarán
el documento a las oficinas del Parque Nacional Galápagos (DPNG). Esta
institución tiene la facultad de negar o aceptar la solicitud.
• El material a ser enviado deberá ser previamente certificado por el veterinario dela Fundación Charles Darwin (FCD) a fin de hacer constar que las muestras no
implican ningún peligro para los seres humanos.
• En caso de ser aceptada la solicitud, la DPNG revisará y constatará lascondiciones y cantidad de material que será enviado a colaboradores externospara la correspondiente identificación.

Edición por Stuart Banks 127• Habiendo pasado el proceso de validación, se deberá enviar un juego (copias)
con toda la documentación requerida a fin de que instituciones de control en
Galápagos y Ecuador continental verifiquen que las muestras han cumplido con
todos los parámetros para la salida del país de forma legal.
• Igualmente, cuando los especímenes retornan a la colección, se debe informar
en el formulario de préstamo, y una copia de este debe ser entregada aldepositante. En la base de datos se deberá llenar el campo de 'devolución'.

Resumen de normas para el trabajo dentrodel área de la colección• Solo puede ingresar personal autorizado o con permiso del curador o asistentedel curador.
• Dentro de la colección, utilice siempre mandil, guantes quirúrgicos y mascarillade gases.
• Únicamente se debe botar en el basurero corto-punzante-clínico del laboratorio
seco: agujas, vidrio, material cortante como (hojas de escalpelo o bisturí), jeringas, gasas contaminadas, guantes quirúrgicos, etc.
• Está terminantemente prohibido comer y consumir bebidas dentro del museo.
• Tras el uso de equipos o mesones de las instalaciones, es su responsabilidad:
encargarse de lavar los equipos metálicos con agua dulce, y otros materiales(como plásticos o vidrio) con agua de la llave, detergente o jabón líquido; secary, si el caso ameritara, desinfectarlos.
• Si requiere el uso de equipos electrónicos informe su uso. Si desconoce el uso
de algún equipo en particular, solicite ayuda.
• Los congeladores son exclusivamente para el uso de material biológico detrabajo, al usarlos deberá dejar constancia en el registro del laboratorio (con elencargado). Las muestras respectivamente etiquetadas.
• Si el científico desea guardar sus muestras en el congelador por largo tiempo,
es necesario comunicar al curador del museo y registrarlo en el cuaderno dellaboratorio.
• Está prohibido verter o botar líquidos tóxicos (alcohol, formalina) por losdesagües de los lavabos. Para hacerlo se deberá seguir paso a paso el protocolo
para la eliminación adecuada de residuos usados.
• Al finalizar el trabajo o el día debe dejar limpio y ordenado su espacio de trabajo
e implementos que haya utilizado: luces y regletas apagadas, ventilador/aireacondicionado apagados, puertas y ventanas bien cerradas, instrumentos
de trabajo en sus lugares correspondientes, y estéreos microscopios o
microscopios apagados y cubiertos con sus respectivos protectores.
• Si trabaja con muestras de olores nauseabundos, use el laboratorio húmedo alaire libre para que los olores se disipen y pueda continuar en el área interna conel procesamiento de las muestra.
• Cada laboratorio cuenta con puntos de red que agilitaran su trabajo. Utilice
los puntos de red internos de cada laboratorio cuando su trabajo se encuentre
ligado a consultas en red, recuerde que otros usuarios podrían necesitarlo.
En caso de emergencia médica
En caso de cortes, abrasiones, quemaduras, o si ha ingerido accidentalmente algún
producto químico o nocivo, se seguirán los siguientes pasos:• Al accidentado se le proveerá primeros auxilios.
• Simultáneamente, se contactará con el servicio médico.
• Se avisará al responsable del laboratorio o director del departamento para confirmar lo ocurrido e indagar las razones del accidente.
• El encargado entregará un informe al responsable directo de los laboratorios y a
su vez se enviará una copia al responsable de la seguridad y logística del grupo
de ciencias.

128 Manual de Monitoreo Submareal

En caso de incendios controlables o incontenibles• Mantenga siempre la calma y avise a los demás sobre lo ocurrido.
• Si el fuego es pequeño y se puede utilizar un extintor, úselo. Pero si el fuego es
de proporciones considerables no se arriesgue, mantenga la calma y evacúe.
• Si debe evacuar del sector, apague todos los equipos electrónicos posibles que
no estén cercanos a las llamas, y cierre bien todas las puertas y ventanas paraevitar alimentar al fuego con oxígeno.
• Evacue la zona por la puerta más cercana y, en caso de ser necesario, puede
romper el vidrio de la ventana más cercana. No corra, camine rápido, de serposible, en fila india, tapándose el rostro con las manos o con alguna ropa (depreferencia, húmeda). Si es necesario, evacúe agachado para evitar respirar elhumo tóxico. En caso de que su ropa se empiece a incendiar, no intente sacársela
desesperadamente porque podría expandir más la llama; por el contrario, ruedeen el piso hasta que la llama se apague por falta de oxígeno o, si alguna persona
está cerca de suyo, llame su atención pidiéndole ayuda para extinguir el fuego
de su ropa.
• No lleve consigo objetos que podrían dificultar su salida.
Tiburón tintorera, Triaenodon obesus (Imagen: R. Gallardo)

Edición por Stuart Banks 129

19

Hojas de datos de campo. (Imagen: S.Banks)

El Manejo
de datos
La colección y el manejo de datos involucran una serie de pasos bien definidos que
deben ser implementados durante cada salida de campo y/o lugar investigado.
Estos pasos incluyen:• El registro de las observaciones en el campo.
• La codificación de datos.
• La revisión de la información durante y después del buceo, incluso con sus
compañeros.
• La limpieza y preparación de los datos de modo que sean legibles como
respaldo en su hoja de campo.
• El ingreso de los datos en forma digital por medio de una copia personal de laBase de Datos Submarina Remota.
• La revisión de los datos ingresados.
• Entrega al responsable del viaje de campo. Este tiene la responsabilidad dejuntar los datos en una base de datos central con copias en hojas planas parasu respaldo y análisis.
Aunque no suena como la parte más emocionante del monitoreo, es sin duda un
ejercicio clave que asegura la validez y el éxito de todo el esfuerzo invertido y es una
pieza clave y el fundamento para comparaciones válidas en el futuro.

Colección de la información durante los buceos
Arriba: Aunque el ritmo de trabajo de campo
puede ser agotador, es importante asegurarla entrada de datos antes de finalizar cadaviaje. (Imágenes: S.Banks y G.Feldman)

La colección de la información se realiza en hojas impermeables sobre tableros,tanto para sésiles como para peces. También se pueden usar tubos de PVC,
colocados en el antebrazo con ligas de caucho, para invertebrados móviles si se
prefiere.
Generalmente, cada especie ocupa una hilera dentro de la base de datos, mientras
que en las columnas se registra la abundancia que puede estar separada en

130 Manual de Monitoreo Submareal

columnas de acuerdo a las tallas, como es el caso de peces. Las columnas suelen
estar dividas en secciones del transecto (T1, T2, T3 y T4) para el caso de peces,o numero de cuadrantes (Q1- Q10) para sésiles y (B1-B20) para invertebrados
móviles. En esta guía hay ejemplos de las hojas de campo en cada sección y losformatos en blanco están disponibles en los archivos del área marina de la FCD enformato digital.
Este se debe de imprimir en ambos lados de las hojas en fotocopiadora (no en
una impresora de inkjet). El papel que se utiliza es especial para el agua (no solo
resistente a lluvia) y normalmente comprado en EE.UU. La compañía Rite in theRain tiene un producto llamado 'DuraCopy Waterproof laser paper' que ofrece
resmas de 100 hojas de A4 (#6512).
Una vez terminado el buceo, todos los integrantes del grupo deberán asegurarse
que los nombres y números escritos sean legibles; además, deben colocar elcódigo de las especies en el extremo izquierdo de la hoja. Posteriormente, cadaintegrante debe asegurarse de lavar y colocar las hojas en un lugar seguro. Se
recomienda llevar un recipiente hermético y seguro para este propósito, con una
carpeta para colocar las hojas usadas una vez que los datos estén ingresados en
su copia de la base de datos.

Codificación de los datos
En cada hoja de campo deberá constar la siguiente información: localidad, sitio,
fecha, tiempo de buceo, nombre del buzo y del equipo de buceo, temperatura,
fuerza del oleaje, intensidad de la corriente, método empleado y los nombres delas especies o los códigos claramente descritos. Si el buzo está familiarizado con
los códigos, puede abreviar los nombres de la mayoría de especies, incluyendo elnombre de la isla, del sitio, del buzo, del grupo monitoreado, etc.

Revisión de los datos
Las hojas deberán ser chequeadas por el investigador principal y por el buzo
encargado para asegurarse de que no existan errores. Se debe confirmar laidentificación de las especies registradas y discutir cualquier discrepancia en
cuanto al rango de las especies, los tamaños (en caso de peces e invertebrados
móviles) y las abundancias respectivas.

Almacenamiento
Posteriormente, las hojas deben ser lavadas, secadas y almacenadas en un lugar
seguro hasta que los datos puedan ser ingresados a la computadora. Todos losdatos originales, o una copia en papel original, quedarán guardados y archivados
en el laboratorio.

Ingreso de datos
La información deberá ser ingresada en una base de datos de MS access con unformato similar al de las hojas de datos utilizadas bajo el agua. Desde el 2004,
la FCD ha mantenido una base remota del campo diseñada para el ingreso delos datos submareales (figura 19-1). Además de estar vinculada con las tablas desitios y especies, esto permite que se puedan detectar errores. Esta informaciónde referencia está actualizada antes de cada salida de campo. La base remota
tiene un manual asociado y normalmente los integrantes del viaje de monitoreo
pasan por unas prácticas para estar familiarizados con su uso antes de las salidas
de campo. Las hojas de datos son transformadas a un formato adecuado para su
posterior análisis, y archivadas como tablas de Excel por cada grupo de monitoreo.
Una vez que los datos han sido ingresados a la computadora, las hojas de accessdeben ser revisadas por cada uno de los buzos y comparadas con las hojas dedatos para verificar que no existan errores.

Edición por Stuart Banks 131

Figura 19-1: La portada de la Basede Datos Ecológica Submareal
Remota. La base de datos decampo fue diseñada para asegurar
el ingreso de datos durante losviajes al campo de buceo y está
vinculada con la base de especies ycolecciones de la FCD.

Otras consideraciones
Para asegurar la calidad y consistencia de la recolección de información, durante,
antes y después de la colección de datos, es aconsejable seguir los siguientes
pasos:• Escribir con letra legible en la hoja de campo la fecha, el sitio (nombre de la islamás cercana y de la localidad), el nombre del buzo y de los integrantes del equipo
de monitoreo y, de ser posible, las coordenadas (GPS) si es un sitio nuevo.
• Asegurarse de colocar suficientes soportes elásticos en el tablero de campopara no perder las hojas bajo el agua y colocarlas en un lugar seguro despuésde la inmersión.
• Revisar la hoja de datos en la superficie inmediatamente después de la inmersión, para clarificar los nombres con las guías de campo y colocar los códigoscorrespondientes para cada una de las especies.
• Ingresar los datos a la computadora lo más pronto posible después de cadabuceo, de lo contrario, será muy difícil recordar el nombre o la estructura de las
especies no identificadas, nuevas o difíciles de recordar, y las características
particulares del sitio monitoreado.
• Cuando termines de ingresar los datos, antes de poner tu película favorita en elDVD, ayuda a tus compañeros que tengan problemas ingresando sus datos. La
cantidad de información levantada varía bastante entre tipos de monitoreo, y
un apoyo para leer las hojas mientras se digitalizan los datos o arreglar un error
en la base de datos, puede ayudar considerablemente e inclusive contribuir aestandarizar observaciones entre buzos.
• Una política que ha funcionado –y que fue necesaria en años anteriores paraevitar problemas– es que todos los datos deben quedar ingresados antes deque la gente salga del barco.

132 Manual de Monitoreo Submareal

Edición por Stuart Banks 133

Caballo de mar, Hippocampus ingens. (Imagen: R. Gallardo)

Raya Águila, Aetobatus narinari (Imagen: R. Gallardo)

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Raya Águila, Aetobatus narinari (Imagen: R. Gallardo)

Edición por Stuart Banks 137

Puerto Ayora - Santa Cruz - Galápagos - Ecuador (Imagen: R. Gallardo)