福 岡 県 農 業 総 合 試 験 場 研 究 報 告 27 (2008)23

福岡県におけるタバココナジラミバイオタイプ Q の発生状況と施設栽培トマト
およびナスに発生するタバココナジラミ個体群の薬剤感受性
浦広幸*・嶽本弘之

福岡県内では，2005年にトマト，ナスでタバココナジラミバイオタイプQの発生を確認した。そこで，野外（筑後市）およびトマトやナスなどの栽培施設内(26地点)に発生しているタバココナジラミのバイオタイプを調査するとともに，施設内で発生している19個体群に対する薬剤感受性の検定を行った。その結果，野外ではコナジラミ類はタバココナジラミバイオタイプQ，バイオタイプB，オンシツコナジラミおよび種名未詳のコナジラミ類が混発していたが，栽培施設内では267個体中254個体をバイオタイプQが占めていた。主要薬剤に対する感受性検定では，ピリダベン水和剤，ニテンピラム水溶剤およびエマメクチン安息香酸塩乳剤に対し高い感受性が維持されていたが，ジノテフラン水溶剤やスピノサド水和剤は地域，濃度により殺虫効果が大きく異なり，感受性の低下が示唆された。
[キーワード：タバココナジラミ，バイオタイプQ，薬剤感受性］
Occurrence of the Q biotype Bemisia tabaci in Fukuoka prefecture and susceptibility to pesticide of populations collectedfrom greenhouses. URA Hiroyuki and Hiroyuki TAKEMOTO(Fukuoka Agricultural Research Center, Chikushino, Fukuoka 818-8549, Japan) Bull. Fukuoka Agric. Res. Cent. 27: 23- 28(2008)The Q biotype of sweet potato whitefly Bemisia tabaci was for the first time found on tomatoes and eggplants in Fukuoka
prefecture in 2005. We investigated biotypes of whiteflies which occurred on tomatoes and eggplants potted outdoors in a fixlocation (Chikugo City) and in 26 vegetable greenhouses prefecture-wide. In addition we examined sensitivity to pesticides of 19
populations collected from greenhouses. While, the whiteflies obtained from outdoor tomatoes and eggplants were identified as
Bemisia tabaci Q biotype, B biotype, greenhouse whitefly Trialeurodes vaporariorum and unknown indigenous whitefly.
But, 254 individuals of 267 individuals collected from greenhouses was identified as the Q biotype. With regard tosusceptibility to pesticide, high sensitivity was maintained for Pyridaben, Nitenpyram and Emamectin, but difference of thesensitivity was seen in Dinotefuran and Spinosad due to locations or concentrations. Sensitivity to Dinotefuran and Spinosad wassuggested to be lowed.
[Keywords : Bemisia tabaci , biotype , pesticide susceptibility]緒

言野菜，花卉類の害虫であるタバココナジラミBemisia tabaciには寄主植物が異なる寄主レースや形態以外の生物学的特徴が異なる数多くのバイオタイプが知られている
2) 。日本には，スイカズラ，サツマイモなどに生息する在来系統と1989年に海外から侵入した系統であるタバコ
コナジラミバイオタイプB（以下，バイオタイプBと記す）がこれまで存在していた。バイオタイプBはシルバーリー
フコナジラミとも呼ばれ，トマト黄化葉巻病を媒介する重要害虫であるが，物理的防除法と薬剤防除とを組み合わせるなどの効果の高い防除法が開発・普及しつつあり，大被害をもたらすことは少なくなってきていた。ところが，2004年にUeda and Brownによって地中海沿岸が原産地と推定されるタバココナジラミバイオタイプQ（以下，バイオタイプQと略す）が国内に侵入し，広島県，熊本県および鹿児島県で発生していることが明らかにされた11)。
この新たな侵入系統であるバイオタイプQはバイオタイプ
Bと同様にトマト黄化葉巻病ウイルスを媒介し（北村・本多，未発表），バイオタイプBに対して効果が高いピリプ
ロキシフェン製剤，多くのネオニコチノイド系殺虫剤，合成ピレスロイド系殺虫剤に対する感受性が低く，効果の高い薬剤が少ないことが報告されている 3, 5, 6, 7, 9) 。
＊連絡責任者（病害虫部）

また，バイオタイプQとバイオタイプBは外部形態に違いが認められないため，その識別には近年開発されたPCR‑
RFLP10)あるいはマルチプレックスPCR8)を用いる必要がある。
福岡県においても2003年頃より，ナス，ピーマン，パプリカ，アスパラガスでタバココナジラミが多発する事例が認められるようになり，2005年に行った調査で本県におけるバイオタイプQの発生を確認した4) 。しかしながら，施設内外での発生状況および薬剤感受性についての詳しい調査はこれまでなされていない。そこで，効果的な防除対策を構築するための基礎的知見を得る目的で，県内の主要ナス科施設野菜であるトマトとナスについて各産地の施設内でのバイオタイプQおよびBの発生状況およびそこで採取したタバココナジラミ個体群の薬剤感受性，また野外での発生推移を調査したのでその結果を報告する。

材料および方法
１ バイオタイプQの発生状況調査(1)供試個体 野外におけるタバココナジラミの発生状
況の調査は，2006年 5月上旬から11月下旬まで筑後市和泉の筑後農林事務所敷地内で実施した。コナジラミ類のトラップとしてポット植えした 5〜6葉期のトマト ハウ
ス桃太郎 とナス 筑陽 の苗それぞれ12株を設置し，福 岡 県 農 業 総 合 試 験 場 研 究 報 告 27 (2008)

期間中1週間間隔で交換し，コナジラミ類の寄生数を数えるとともに，一部の個体についてはバイオタイプの検定を行った。検定に用いたコナジラミ類の採取は 5月22日から 2週間間隔で行い，各採取日に寄生数が10頭以下の場合は全個体を，10頭を超える場合は10頭をランダムに選びバイオタイプの判定に用いた。
施設内で発生しているタバココナジラミの採取は，施設栽培トマトおよびナスの栽培終期にあたる2006年 4月〜 7月に，県内の10市 5町， 4作物，26圃場（第 1表）で実施した。 1圃場あたりコナジラミ類各10〜12頭をバイオタイプの判定に用いた。
(2)虫体からの核酸抽出 虫体からの核酸の抽出は，野田博明らの方法（1998，私信）に準じて行った。すなわ
ち，1.5mLのマイクロチューブに県内各地から採取したタバココナジラミ成虫1頭，DNA抽出バッファー（1M NaCl100μL, 0.5M EDTA 2μL, 1M Tris‑HCl 10μL, 滅菌蒸留水 888μL）9μLを入れ，摩砕棒を用いてすり潰した。
遠心（13,000rpm,10sec）により摩砕液をマイクロチューブの下に集めた後，プロテアーゼK（10mg/mL）1μLを加え，37℃・30分間酵素処理した。酵素処理後，95℃・1分間の熱処理を行ったものを鋳型DNAとして用いた。
(3)マルチプレックスPCR法によるバイオタイプ判定
バイオタイプQおよびBに加えオンシツコナジラミ
Trialeurodes vaporariorumを識別できるマルチプレックスPCRは，三浦の方法8) に準じて行った。すなわち，PuRe Tag‑Ready‑To‑Go PCR beads（Amersham社製）を使用し，滅菌蒸留水20μL，プライマー｛ミトコンドリア16S領域フォワード側 16S‑Fsimon（コナジラミ用） CCGG
TTTGAACTCAGATCATGT 0.25μL，16S‑FSPTV（オンシツコナジラミ） GTGATGTTAATTGTTGGCG 0.5μL，16S‑FSPQ（バイオタイプQ） ATTAACTAAATGATATTAAATC 1.0μL，リバース側 16S‑Rsimon（コナジラミ用） CGCCTGTTTAACAAAAACAT 1.75μL，ミトコンドリアCO1 領域フォワード側
CO1‑FSPB（バイオタイプB） CACTATAATTATTGCTGTTCCC
0.5μL，リバース側 L2‑N‑3014（コナジラミ用） TC
CAATGCACTAATCTGCCATATTA 0.5μL（濃度は全て10ｐmol/μL）｝，鋳型DNA １μLを加え総量25.5μLのPCR混合液を調整した。PCRは，96℃・10分間，（92℃・1分間，46℃・1分間，72℃・1分30秒間）×35サイクル，72℃・1分30秒間の条件で行った。PCR産物は，1.5%アガロースゲルを用いて電気泳動しバイオタイプの判定を行った。また，本法で判別できない個体については，九州沖縄農業研究センター上田重文博士に依頼し， 2頭のミトコンドリアチトクロームオキシダーゼI遺伝子領域を解析した結果，タバココナジラミとは別属と考えられるコナジラミ類で種名の特定はできなかった（上田重文，私信）ので，種名未詳のコナジラミとした。
２ 薬剤感受性検定(1)供試個体 試験 1のトマトおよびナス圃場中の19圃
場（第 1表）から採取した個体群を用い，雌成虫と思われる大型の成虫を選び供試した。なお，別途実施したバイオタイプの検定によると，感受性検定個体を採取した
12トマト圃場でのバイオタイプQの発生割合は平均92.5%，ナスでは7ほ場とも100%であった。
(2)供試薬剤 松浦7)、樋口5)によりバイオタイプQに対24して効果があると報告されている剤のうち，トマトまたはナスで使用される主要な薬剤であるピリダベン水和剤（サンマイトフロアブル），ニテンピラム水溶剤（ベストガード水溶剤），エマメクチン安息香酸塩乳剤（アファーム乳剤），ジノテフラン水溶剤（スタークル／アルバリン
顆粒水溶剤），アセタミプリド水溶剤（モスピラン水溶剤），スピノサド水和剤（スピノエース顆粒水和剤），ピリミホスメチル乳剤（アクテリック乳剤）およびキノキサリン水和剤（モレスタン水和剤）を用いた。トマトから採取した個体群では 5剤，ナスから採取した個体群では 7剤を供試した。供試薬剤はトマトおよびナスの登録に従った濃度に調整し，処理した。また，無処理には薬剤を希釈するために使用した水道水を用いた。
(3)検定方法 薬剤に浸漬したキャベツ葉を用いる樋口の方法5)を改変し，ナス葉を用いて検定した（第 1図 ）。
すなわち，直径30㎜高さ10㎜のプラスチックシャーレの底を切り抜き，ゴースを張り，側面にタバココナジラミを接種するための小さな穴をあけたものを作製し検定容器として用いた。は種30日後のナス株から採取した葉（短径45㎜〜60㎜）を所定濃度に調整した薬液に10秒間浸漬した後，風乾した。風乾した葉を上記の検定容器に挟み込み，タバココナジラミの成虫を容器当たり約10頭接種した。薬剤につき３容器（合計約30頭）を供試した。なお接種虫の逃亡を防ぐため，検定容器は輪ゴムで縛り、接種用の穴には綿栓をした。また、薬剤を処理したナス
葉が萎れないよう、蓋に10mmの穴を開けた容器に 8割程度まで水を入れ、葉柄を水に浸けた。25℃，16時間日長の恒温室内に静置し，接種5日後，容器のふたを開けピンセットの先でつついて生死を判定し，Abbottの補正式１）より補正死亡率を算出した。

第１図 タバココナジラミ個体群の薬剤感受性検定に用いた試験容器とその設置状況

結 果
1 バイオタイプQの発生状況(1)野外における発生状況 各週の採取したコナジラミ類の総数および採取個体の一部をマルチプレックスPCRで解析した結果から，野外のトマト，ナスにおけるコナジラミ類の発生状況を推定し第 2図に示した。コナジラミ類は 5月下旬から捕獲され始め，11月末までの総捕獲頭数はトマトで442頭，ナスでは952頭とナス苗トラップで

福 岡 県 農 業 総 合 試 験 場 研 究 報 告 27 (2008)

多く採集された。採取個体の一部をマルチプレックスPCRで解析した結果，トマト苗トラップから採集したコナジラミ類94頭のうちバイオタイプQが 31頭（33%)，バイオタイプBが25頭(26.6%)であった。他はオンシツコナジラ
ミが 2頭(2.1%)，種名未詳のコナジラミ類が36頭(38.3%)であった。ナス苗トラップ採集虫では，103頭のうちバイオタイプQが 48頭（46.6%)，バイオタイプBが35頭(34.0%)，種名未詳のコナジラミ類が20頭(19.4%)であった。苗トラップの違いによるバイオタイプ別の寄生性に有意な差は認められず，調査期間を通じトラップ上にはバイオタイプQおよびBが発生していた。 しかし， 8月から 9月
はナス苗トラップでバイオタイプQが多く，10月以降にはトマト，ナス苗トラップともにバイオタイプBが多い傾向が認められた。
(2)施設内における発生状況 施設内におけるコナジラミ類の発生状況を第1表に示した。トマトでは，調査した15地点全てでバイオタイプQが発生し，検定した154頭中144頭（93.5%）をバイオタイプQが占め，バイオタイプBは5頭（3.2%）のみであった。ナスにおいても，調査した

寄生頭数（頭/１２株）

12010080

タバコQ258地点全てでバイオタイプQが発生し，検定した81個体中79個体（97.5%）をバイオタイプQが占め，バイオタイプBは全く確認されなかった。キュウリ1地点およびトルコギ
キョウ2地点でもバイオタイプQが優占的に発生していた。
2 薬 剤 感 受 性 検 定
バイオタイプQの発生割合が平均92.5%の施設栽培トマ
ト圃場から採取したタバココナジラミ12個体群に対する薬剤感受性検定の結果を第 2表に示した。ピリダベン水
和剤1000倍，ニテンピラム水溶剤2000倍，エマメクチン安息香酸塩乳剤2000倍に対して，全ての個体群は補正死亡率が94.5〜100％と，高い感受性を示した。一方，ジノ
テフラン水溶剤3000倍に対しては，みやま市を除く県南部の筑後市，八女市，黒木町，柳川市から採取した個体群では，23.8%〜52.6%と補正死亡率が低く，感受性低下がみられた。また，スピノサド水和剤5000倍に対しては，福岡市個体群の補正死亡率は100%であるのに対し黒木町個体群では21.7%であるなど個体群間で薬剤感受性が大きく異なった。

トマト苗トラップ

タバコB
オンシツ
種名未詳

6040
20

８月１６日
８月２９日
９月１２日
９月２６日
１０月
１０日
１０月
２４日
１１月７日
１１月
２１日

８月１日

７月
１８日

７月４日

６月２０日

６月６日

５月２２日

0

ナス苗トラップ

10080
60
40
20

８月
１６日
８月２９日
９月
１２日
９月２６日
１０月
１０日１０月２４日
１１月７日
１１月２１日

８月１日

７月１８日

７月４日

６月２０日

６月６日

0
５月２２日

寄生頭数（頭/１２株）

120

第2図 トマトおよびナス苗トラップにおけるコナジラミ類の寄生状況（2006年 筑後市和泉）
1)各週の採取したコナジラミ類の総数および採取個体の一部をマルチプレックスPCRで解析した結果から，野外のトマト，ナスにおけるコナジラミ類の発生状況を推定した。
2)寄生頭数が10頭以下の場合は実数，10頭を超える場合は推定値。
3)タバコQ；タバココナジラミバイオタイプQ，タバコB；タバココナジラミバイオタイプB（シルバーリーフコナジラミ），オンシツ；オンシツコナジラミ，種名未詳；種名未詳のコナジラミ類を示す。

福 岡 県 農 業 総 合 試 験 場 研 究 報 告 27 (2008)26

第 １ 表 施 設 内 に お け る タ バ コ コ ナ ジ ラ ミ バ イ オ タ イ プ Qの 発 生 状 況 （ 2006）
作物名採取場所
採 取 日 検 定 虫 数 タ バ コ Q 1) タ バ コ B 1) オ ン シ ツ 1)
（頭）
トマト
福岡市西区
※ 2) 6/15
101000新宮町※
6/1310901
遠賀町
※
6/12
101000嘉麻市※
6/13
101000朝倉市※
6/1210640
うきは市吉井町※
6/12101000
久留米市
※
6/12
101000筑後市※
6/14
101000八女市※
6/14
101000黒木町※
6/1410604
柳川市
※
6/14
101000
みやま市高田町※
6/14
101000筑後市4/25121200
筑後市
4/25
121110久留米市
6/20
101000トマト計
15 地 点
154
144 ( 93.5 )5 ( 3.2 )5 ( 3.2 )
ナス
二丈町
※
7/4
101000新宮町※
7/4
101000筑前町※
6/27
101000筑後市※
7/4
101000柳川市※
7/4
101000
みやま市瀬高町① ※
7/4
101000
みやま市瀬高町② ※
7/4
101000
筑紫野市
4/21
1190
2（試験場内）ナス計8 地点
8179 ( 97.5 )0 ( 0.0 )2 ( 2.5 )
キュウリ
久留米市
5/18
121200トルコ
みやま市高田町
6/23
101000
ギキョウみやま市瀬高町
6/23
10910トルコ計
2 地点
2019 ( 95.0 )1 ( 5.0 )0 ( 0.0 )合計
26 地 点267
254 ( 95.1 )6 ( 2.2 )7 ( 2.6 )1)タバコQ；タバココナジラミバイオタイプQ, タバコB；タバココナジラミバイオタイプB（シルバーリーフコナジラミ）,オンシツ；オンシツコナジラミ。(カッコ)内の数字は発生割合（％）を示す。
2)※印は，薬剤感受性検定を行ったほ場を示す。
バイオタイプQの発生割合が100%の施設栽培ナス圃場
から採取した 7個体群に対する薬剤感受性検定の結果を第 3表に示した。ニテンピラム水溶剤2000倍，ジノテフ
ラン水溶剤2000倍，エマメクチン安息香酸塩乳剤2000倍およびスピノサド水和剤2500倍では，補正死亡率が全個体群でほぼ100％であった。また，ピリミホスメチル乳剤
500倍は補正死亡率65.6〜95.3%，キノキサリン水和剤
2000倍はみやま市瀬高町②個体群で補正死亡率が54.4%とやや低かった以外はおおむね70%以上であった。アセタミ
プリド水溶剤4000倍は補正死亡率17.6〜86.1%と個体群間で薬剤感受性が大きく異なった。

考察

今回調査したトマト，ナス，キュウリ，トルコギキョ
ウの施設内ではバイオタイプQがコナジラミ類全体の95%以上を占めており，宮崎県7） および熊本県 5) と同様に，本県においてもバイオタイプQが施設内で優占的に発生していることが確認された。しかし，野外ではバイオタイ
プQおよびB，オンシツコナジラミおよび種名不詳のコナジラミ類が混発しており，施設内では慣行的な薬剤防除によって，バイオタイプQに比べ薬剤感受性が高いバイオタイプB，オンシツコナジラミ5, 6, 7)等が淘汰されているものと推測された。
松浦 7) は宮崎県で採取したバイオタイプQの １個体群を供試し，効果の高い薬剤としてジノテフラン水溶剤2000倍，ニテンピラム水溶剤1000倍，ピリダベン水和剤1000倍，キノキサリン水和剤3000倍，エマメクチン安息
香酸塩乳剤2000倍およびスピノサド水和剤5000倍を報告している。また、樋口 5) は，熊本県で採取したバイオタ
イプQ個体群に対する殺虫効果を検討し，ピリダベン水和剤1000倍，ニテンピラム水溶剤1000倍，ジノテフラン水溶剤3000倍，エマメクチン安息香酸塩乳剤2000倍，DNTP

福 岡 県 農 業 総 合 試 験 場 研 究 報 告 27 (2008)27

第 2 表 施 設 栽 培 トマ トか ら 採 取 した タバ ココナ ジ ラミ個 体 群 の 薬 剤 感 受 性
補 正 死 亡 率 ( % ) 1)
採取場所
ピ リダ ベ ン ニ テ ン ピ ラム エ マ メクチ ン ジ ノテ フ ラ ン ス ピ ノサ ド
1000倍
2000倍
2000倍
3000倍
5000倍
福岡市西区
100
100
100
100100新宮町
10010010094.1
45.3
遠賀町
100
100
100
100
72.9
嘉麻市
100
100
100
100
85.2
朝倉市
100
100
100
97.7
48.8
うき は 市 吉 井 町
100
100
100
100
64.3
久留米市
100
100
100
100
47.5
筑後市
100
100
100
23.8
31.4
八女市
100
95.0
100
52.6
45.8
黒木町
94.5
97.7
100
33.1
21.7
柳川市
100
100
100
34.9
27.7
み や ま市 高 田 町
100
94.9
100
79.3
28.3
1 ) Abbott ( 1925 ) の 補 正 式 に よ り 算 出 。
施 設 栽 培 ナ ス か ら 採 取 した タバ ココナ ジ ラ ミ個 体 群 の 薬 剤 感 受 性
補 正 死 亡 率 ( % ) 1)
採取場所
ニテンジ ノテ
エマメス ピ ノ ア セ タ ミ ピ リミホ
ピ ラム
フラン
クチ ン
サド
プ リド
ス メチ ル
2000倍 2000倍 2000倍
2500倍
4000倍
500倍
二丈町
100
100
100
98.2
49.5
88.8
新宮町
100
100
100
100
65.0
90.1
筑前町
100
100
100
100
31.1
65.6
筑後市
100
100
100
100
86.1
87.6
柳川市
100
100
100
100
84.6
76.5
み や ま市 瀬 高 町 ①
100
100
100
100
17.6
95.3
み や ま市 瀬 高 町 ②
100
100
100
100
30.3
93.8
1 ) Abbott ( 1925 ) の 補 正 式 に よ り 算 出 。

無処理
−
6.1
13.2
14.8
5.9
2.4
8.5
7.5
5.0
0.0
2.6
9.5
6.0

第 3表水和剤1000倍，スピノサド水和剤5000倍およびピリミホスメチル乳剤500倍を殺成虫効果が期待できる剤として報告している。薬剤散布履歴が異なる県外産個体群間で薬剤感受性が非常に似通った事例としては，佐賀県産１個体群，千葉県産 2個体群を用いて薬剤感受性を調査した小林 6) の報告があり，似通った理由として，個々の地域で薬剤淘汰を受けた結果、似通った薬剤感受性を持つようになったのではなく、同一系統のバイオタイプQが付着苗の移動などにより各地に伝播していったと推論している。
今回，ナスから採取した 7個体群は，ニテンピラム水溶剤2000倍，ジノテフラン水溶剤2000倍，エマメクチン安息香酸塩乳剤2000倍およびスピノサド水和剤2500倍に対し高い感受性を示した。一方、施設栽培トマトから採取した12個体群は，ピリダベン水和剤1000倍，ニテンピラム水溶剤2000倍，エマメクチン安息香酸塩乳剤2000倍に対しては全ての個体群で高い感受性を示したが、ジノテフラン水溶剤3000倍に対して県南部の個体群で感受性が低く，スピノサド水和剤5000倍に対する感受性は個体群により大きく異なった。このようにニテンピラム水溶剤，ジノテフラン水溶剤およびエマメクチン安息香酸塩
乳剤に対しては高い感受性が維持されているが，ジノテフラン水溶剤，スピノサド水和剤は濃度が低下すると殺

キ ノキ
サ リン
2000倍
69.1
80.3
79.3
74.1
78.2
69.854.4

無処理
−
4.8
13.7
3.2
14.3
11.9
17.2
22.6

虫効果に差違が見られるようになり，県内では既に感受性の低下が起き始めていることが示唆された。
本県内へバイオタイプQが侵入した時期は明らかでないが，侵入から数年のうちにジノテフラン水溶剤，スピノサド水和剤に対して感受性が低下している個体群の発生が確認されたので、目合いの小さい防虫ネットや近紫外線除去フィルムなどコナジラミに対して有効な物理的防除法と薬剤防除を組み合わせた総合的防除対策を確立することが急務である。そのためには，今後とも施設内で発生するタバココナジラミのバイオタイプおよび薬剤感受性の定期的なモニタリング調査が必要であると考えられる。

謝 辞本研究を遂行するにあたり，多くのご指導・ご助言をいただいた野菜茶業研究所本多健一郎博士，九州沖縄農業研究センター上田重文博士，広島大学大学院千吉良敦
史氏に深謝致します。

引用文献

福 岡 県 農 業 総 合 試 験 場 研 究 報 告 27 (2008)

1) Abbott,W.S(1925) A method of computing theeffectiveness of an insecticide. J. Econ.
Entomol. 18:265‑267.
2) 本多健一郎(2006) トマト黄化葉巻病と媒介コナジラ
ミ，防除法を巡る研究情勢と問題点. 野菜茶業研究
集報 3:115‑122.
3) Horowitz, A.R., Kontsedalov, S., Khasdan, V. andIshaaya, I. (2005) Biotypes B and Q of Bemisiatabaci and their relevance to neonicotinoid andpyriproxyfen resistance. Arch. Insect Biochem.
Physiol. 58:216‑225.
4) 福岡県病害虫防除所(2005) 平成17年度病害虫発生予察特殊報第1号.
5) 樋口 聡志（2006）熊本県におけるタバココナジラミ
バイオタイプQの発生状況と薬剤の殺虫効果. 今月の農業 50(9):84‑88.
6) 小林政信(2007) コナジラミ類の薬剤感受性の特性.

28

植物防疫61:21‑26.
7) 松浦 明(2006) 宮崎県におけるタバココナジラミ
バイオタイプQの発生と防除対策. 今月の農業50(2):57‑61.
8) 三浦一芸(2007) タバココナジラミバイオタイプQの簡易識別法. 植物防疫61:315‑318.
9) Rauch, N. and R. Nauen(2003) Identification ofbiochemical markers linked to neonicotinoiod
cross resistance in Bemisia tabaci Arch.
Insect. Biochem. Physiol. 54 : 165‑176.
10) 上田重文(2006) タバココナジラミバイオタイプQの簡易識別法. 九州病害虫研究会報52：44‑48.
11)Ueda,S and J.Brown(2006) First report of the Q
biotype of Bemisia tabaci in Japan bymitochondrial cytochrome oxidase I sequence
analysis. Phytoparasitica 34:405‑411.