ー 論文ー●針状ヒドロキシアパタイトの特徴と応用
高機能材料研究所

第五研究グループ 高木修

ヒドロキシアパタイト（以下HApと略す）は、特にタンパク質等の生体高分子の分離に有用なことで知られていたが、合成方法を研究する者と、それを用いる者とが別々であった為、これまで十分な応用研究がなされなかった。また、従来、HApは板状結晶であった為、カラム充填剤として用いた場合、流速が低下するなどの現象が認められ、使い難い材料であった。この問題に関して岩村ら1)は、HApを湿式合成する際に、反応温度を調整することによって、大粒子のカラム通液性の高いHApが生成することを発見した。
今回、筆者等は、この大粒子のHApを加熱処理した場合のタンパク質吸着挙動の変化や、HApを用いたカラムクロマト分離の際の溶液のpH変化に対するタンパク質溶出パターンの変化などについて検討を行い、本HApの特性について考察を行った。
その結果、大粒子のHApの形状は、従来のHApの板状結晶に対して、針状の凝集体になっており、表面電位及び、タンパク質の分離吸着挙動でも、従来品との差が有ることが分かった。即ち、結晶学的にa面が多いと思われる針状結晶は、主に正に帯電していると思われる酸性タンパク質のBSAをより多く吸着することがわかった。また、HApを加熱すると、部分的な炭酸化が起こり、タンパク質吸着性能が変化する現象も認められた。加熱処理温度が高くなると、BSAの吸着量は更に減少していった。
この大粒子HApをカラムに充填し、反応基質の吸着剤として用いる、新規な固相合成（反応）法について検討を行った。その結果、HApを固相として、IgGの酵素標識化、蛍光標識化等の反応に用いることに成功した。また吸着させたIgGをペプシンで分解させて、F(ab')2を得ることも出来た。
以上から、HApを固相として、様々な固相反応が行える可能性が見出せた。

リン酸二水素一ナトリウム2水塩、水酸化カリウムはキシダ化

1 緒 言学㈱製、試薬特級を用いた。

燐酸カルシウムの一種であるヒドロキシアパタイト

生成したHApを洗浄する為に、0.5M−リン酸ナトリウム緩（Hydroxyl Apatite:以下HAp）は、蛋白質を分離精製する吸着衝液（pH6.8：以下PBSと略す。またPBSの濃度を図表中に示クロマトグラフィー担体として研究されてきた2）。

す場合には、PB conc.と略した。Ｍはモル濃度：mol/1を表す）

クロマトグラフィー担体としてHApを用いると、他の分離を調製した。

モードでは説明できない特異的な分離パターンを示すので、今まで分離できなかった有用物質を分離する事の出来る有用な2.2 HApの合成分離剤の一つと考えられてきた。

岩村等の方法に従って、大粒径HApを合成した1）。
（1）モネタイトの生成

しかし実際には、従来のHApは板状結晶の為、カラム充填した場合に、通液方向と垂直に配向してしまい、目詰まりす1段目の反応として、0.5Ｍ−塩化カルシウム水溶液とる（流れない）という欠点がある。そこでHApは、特徴はある0.5Ｍ−リン酸二ナトリウム水溶液からモネタイトを生成が使い難い分離剤、言わば「他の分離剤で分離できない場合させる。反応式は、CaCl2＋Na2HPO4→CaHPO4＋2NaClの最終手段」として広く知られるようになってしまった。岩村ら１)は、この欠点を改良する検討を行い、大粒径HApの合反応条件は、以下のようである。

成法を見出した。

反応温度：95〜100℃。マントルヒーター使用。

本報告では、このHApの特徴と分離モード、更に、新規用フラスコ：ガラス製3L4つ口フラスコ。冷却管付き。

途である固相合成法について検討した結果を述べる。

滴下条件：1L/4hrs.同時滴下。ローラーポンプ使用。
攪拌速度：100rpm.

2 実 験

（2）熟成

2.1 原材料

攪拌速度、反応温度を保持し、30分熟成。

塩化カルシウム2水塩、リン酸水素二ナトリウム・12水塩、東亞合成研究年報

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第2号

（3）HAp化（アルカリ添加による脱リン）

流速：1ml/分

1M−水酸化カリウム水溶液を添加するとモネタイトは吸着量測定手順

以下の反応をする。

①タンパク質を10mM-リン酸緩衝液（pH6.8、以下10mM−9CaHPO4＋5KOH→PBSと略す）に、1mg/ml濃度となるように溶解した。

Ca（HPO94)（PO24)（OH)
42＋2K2HPO4＋KH2PO4＋3H2Ｏ②HAp2gをカラム充填し、10mM−PBS（pH6.8）で平衡化さ反応条件は、以下のようである。

せた。

反応温度：95〜100℃。

③カラム出口の溶出液を光学密度OD280nmでモニターし、タ滴下条件：0.6L/1hrs.KOH滴下。ローラーポンプ使用。

ンパク質が破過（飽和吸着）するまで、タンパク質溶液を攪拌条件：100rpm.

カラムに連続通液した。

（4）洗浄④10mM-PBS（pH6.8）でカラムを十分洗浄し、未吸着タンパデカンテーションにより上澄みを廃棄してから、リン酸ク質を除去した。

ナトリウム緩衝液により吸着タンパク質を除去し、更に⑤300mM-PBS（pH6.8）を通液し、HApに吸着したタンパク質純水による洗浄を実施した。

を溶出させた。
⑥溶出液中のタンパク質濃度と溶液量から、HApに対するタ以上の合成法（以下、岩村法）と従来の板状HApの合成方ンパク質吸着量を算出した。

法との比較をScheme 1に示した。尚、岩村等によれば、反応温度を45℃にしても大粒子HApが得られるとあるが、筆者は（2）バッチ法得ることが出来なかった。

試験管：10ml-ポリチューブ（蓋付き）
吸着量測定手順①所定のpHの10mM−PBSにタンパク質を溶解させ、10mg/mlにした。
②試験管にHAp 1gとタンパク質溶液 5mlを封入した。
③室温で2時間振とうした。
④メンブレンフィルターで濾過した。
⑤濾液のタンパク質濃度を測定し、吸着量を算出した。
2.5 タンパク質溶出パターンの測定
BSA、塩化リゾチーム、及びチトクロームC （和光純薬製）を吸着させたHAp充填カラムからの、タンパク質溶出パター
ンを以下の条件で測定した。
装 置：東ソー製CCPMポンプ

Scheme.1 Synthetic method of HAp

溶出液：リン酸ナトリウム緩衝液（pH6.8）
溶出法：10〜300ｍM−PBSによるリニアグラジエント法

2.3

形状観察

検 出：OD280nm

走査型電子顕微鏡（日本電子㈱製：以下SEM）を用い、観2.6 表面電位の測定察を行った。

ζ電位計（MALVERN製ゼータマスター）を用い、表面電2.4

タンパク質吸着量の測定位を測定した。測定液のpHは、0.1M−硝酸、水酸化カリウム

BSA（和光純薬製牛血清アルブミンFractionV.）及び塩化リ系溶液で調整した。

ゾチーム（和光純薬製from eggwhite）を用いて、下記の2方法でタンパク質吸着量を測定した。タンパク質濃度は、プロテ2.7 試料の加熱処理

インアッセイ法（バイオラッド製：タンパク質濃度測定キッ

試料の加熱は、200℃までを送風乾燥器（ヤマト製DN61）ト）により測定した。

で、200℃以上については、カンタル炉（ヤマト製FP31）で24時間処理した。

（1）フロー法装置：東ソー㈱製CCPMポンプ

2.8 化学組成分析

カラム：1cmφガラス製カラム（バイオラッド製）

化学組成分析は、高周波プラズマ分光分析法（ICP）で測定した。

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2.9 通液性能の測定
直径1cmのガラス製カラムにHApを充填し、ヘッドボリュームを一定にして通液速度を測定した。
2.10 細孔分布測定
島津−マイクロメリティックスポアサイザ9310形で水銀圧入法により細孔分布を測定した。
2.11 IR測定
フーリエ変換赤外分光法により官能基の変化を測定した。
Fig.1 Difference of protein elution pattern

3 結果と考察
3.1 結晶外観
SEM写真をPhoto 1（従来法）及びPhoto 2（岩村法）に示した。岩村法によるHApが針状結晶凝集体であることが判っ

3.3 pHの影響た（以下針状HApまたはneedle-like HAp)。

pHを変化させた場合のζ電位をFig.2-1に示した。またタン
パク質吸着量の変化をFig.2-2に示した。更に、タンパク質溶出時のリン酸緩衝液の濃度をFig.3に示した。
pHを酸性側からアルカリ性側へ変化させた時のζ電位は、針状HApと板状HApで大きく異なる。タンパク質吸着量の変化、溶出時のリン酸緩衝液濃度の変化及びタンパク質の特性から、タンパク質は針状HApにも電気親和的に吸着している為であると考えられる。

Photo.1 Plate-type HAp

Photo.2 Needle-like HAp

3.2 タンパク質吸着量と溶出パターンの比較バッチ法によるタンパク質吸着試験結果をTable 1に示した。また各タンパク質の特徴をTable 2に示した。針状HApは、板状HApに比較して、酸性タンパク質のBSA吸着量が多く、塩基性タンパク質の塩化リゾチーム吸着量が少ないことが判る。
Fig.2-1 Effect of pH on zeta potential

更にHApにおけるタンパク質の溶出クロマトグラムをFig.1に示した。BSA溶出時のリン酸濃度を比較すると、針状HApからのリン酸濃度の方が高いことより、針状HApの方がBSAをより強く吸着していると考えられる3）。
Table.1 Adsorption capacity of HAp

Table.2 Tested-protein

Fig.2-2 Effect of pH on protein adsorption

東亞合成研究年報13TREND 1999第2号

3.4

加熱の影響

加熱処理したHApによるカルシウムとリン酸のモル比をTable 3に示した。700℃までの加熱では、カルシウムとリンのモル比に変化はみとめられない。
Table.3 Ca/PO4 of heat-treated HAp

Fig.3 Release of phosphate from HAp

また、一般に、HApの化学量論比は、Ca/PO4=1.67であり、下記のように示され、天然の鉱物や乾式合成5）したHApで多板状HApは、板の頂面をc面、側面をa面とした六方晶と呼ばれる構造をしている4）。結晶の表面は、Fig.4の様に考えらく見られる。

れる。a面では、Fig.4（右下）に見られるように2通りの面が（OH）
Ca10（PO4）62

考えられるが、結晶表面には、面密度の高い面が表われ易い

湿式法で合成したHApは、一般に非化学量論的組成6）であと仮定するならば、左側の面が表われ易い。この面では、カ。
ると言われており、以下の様に考えられている（例外もある7））

ルシウム原子4個に対してリン酸基が2個存在する。一方、c面

（PO4）
y（OH）
Ca（HPOx4）6−y2

では、4通り考えられ（Fig.4左側）、1番目と3番目の面が表わ

但し、0＜y、 x=（20−y）/2

れ易い。この面では、カルシウム原子3個に対してリン酸基が針状HApの化学組成は化学組成分析結果よりX=9,Y=2とした。

3個表われる。この、カルシウムとリン酸基の比の差から、a面厳密には、水酸基またはリン酸基の位置に炭酸基が配置されていることも考えられる8）。

は主に正に帯電し、c面は比較的負に帯電していると考えられる。針状HApが塩化リゾチームに比較して、BSAを多く且つ加熱処理した針状HApの加熱時のIRをFig.5に示した。

強く吸着することから、c面よりa面の表面積に占める割合が3500cm−1付近に見られる水酸基の吸収は、自由水のブロード高いと考えられる。よって針状結晶の側面はa面と考えられる。

な吸収の為、定量的なところまで議論はできない。しかし傾向として、100〜220℃加熱処理では、水酸基（631,3573cm−1）による吸収が増加し、700℃まで加熱すると水酸基の量は減少した。

Fig.5 IR spectra（thermal change）

非化学量論的なHApの熱安定性に関して、従来の湿式法
９）HApでは、以下のような現象が起こると考えられている。

①吸着水の脱着（200℃以下）②格子中の水分子の揮発（200℃付近）（250〜600℃）③HPO42−→1/2H2O（↑）
Fig.4 Plane structure of HAp and charge balance東亞合成研究年報④P2O74−＋2OH−→2PO43−+H2O（700〜800℃）

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Table.4 Adsorption weight of heat-treated HAp

炭酸基のピーク（870,710cm−1）は、220℃以上で大きくなるのが認められた。これに関しては、Scheme 2のように考えている。即ち、100〜220℃の加熱処理では、結晶化が促進し、水酸基が明確になる。更に220〜700℃の加熱処理では、水酸基からの脱水が生じてオキシアパタイトの生成と結晶欠陥が発生し、冷却時に不安定な欠陥部分に空気中の炭酸ガスが吸着して炭酸化アパタイトが生成する。

Scheme.2 Thermal change of HAp9）

加熱処理したHApのタンパク質吸着量を、Table 4に、溶出パターンの変化をFig.6に示した。
先ず最初に酸性タンパク質の代表であるBSAについて考える。溶出時のリン酸緩衝液濃度が高いほど、タンパク質の吸着力が大きいと考える。加熱温度が高くなるにつれて、BSA吸着量は減少し、吸着力も低下した。
一方、塩基性タンパク質の代表である塩化リゾチームでは、処理温度が高くなるにつれ、吸着量は僅かに増加していき、吸着力も殆ど変化しない傾向にある。
このことは、加熱によりBSAの吸着できるサイト数が減少し、塩化リゾチームの吸着サイト数は変化しなかった為と考えられた。
粉末X線回折法により得られた回折パターンから、格子定数を求め、Fig.7に示す。a軸は処理温度が上がるにつれ短くなり、c軸は殆ど変化しないと考える。尚、700℃加熱品は、三リン酸カルシウムが生成している為、HApは約半分になっていた（粉末X線の定量分析より）。
Fig.6 Chromatogram of heat-treated HAp
1:BSA 2:Lysozyme chloride 3:Cytochrome C

a軸が短くなるということは、c面の面積が減少するのと同じである。即ち、塩基性タンパク質が優先的に吸着する面積が減少するということである。これは、加熱処理したHApの吸着挙動の変化と矛盾している。加熱処理したHApとタンパク質吸着量の関係に付いては次のように考える。
・c面に対する吸着は、a面に比較して無視できる程度であり、僅かに収縮した程度では塩基性タンパク質の吸着量に対しても影響が少ない。
・加熱により水酸基が抜け、冷却時に炭酸基が入ったとする
ならば、炭酸基の方が水酸基に比較して、塩基性タンパク質の吸着を阻害する効果が少ない。

Fig.7 Cell constant of HAp

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3.5

通液性能来る可能性が有る。

通液性能を測定した結果をTable 5に示した。針状HApの方吸着力の差が分かっていれば、比較的短時間に複合化と、が、はるかに通液性に優れている。細孔分布をFig.8に示した。

複合体の精製が同時に行われ、効率よく高純度の複合体が得HApの密度が約3.17g/cm3であるので、90vol％以上が空隙であられるはずである10）。

ることがわかる。これが高通液性の要因と思われる。

Table.6 Characteristic adsorption on HAp

通液速度は、タンパク質などの生体高分子をカラム分離する研究者にとって、非常に重要なことである。例えば、HPLCなどでポンプを用い、加圧しても板状HApでは、 通液しない＝分離出来ないばかりか有用物質の回収すら出来ない であり、通液しても、 通液速度が遅い＝有用物質の失活を招く、時間のロス の為である。
4.1 酵素標識化抗体の合成11）、12）

カラム充填剤の性能として、分離性能以外に 処理能力＝吸着量×流速 が重要なのは言うまでもない。

酵素と抗体の複合体は、市販されており、酵素の部分を標

Table.5 Flow rate of HAp chromato-column

識として抗体の検出に用いられる。酵素標識化抗体は通常、液相で合成後に精製して得られるが、精製の工程が面倒で純度を上げようとすると収率が落ちるという問題があった。
HApを固相にした場合の酵素標識化抗体合成工程をScheme 3のように考えた。この仮定が正しければ、最後に溶出される物質は単一物質であり、酵素活性と抗体活性の両方が認められるはずである。しかも本法によればロスが無いはずである。

Fig.8 Pore distribution

4 固相合成担体への応用
針状HApは、従来の板状HApと違い、実用的なカラム充填剤である事が分かった。しかし、分離精製カラムとしては、アフィニティカラムや逆相クロマトカラム、イオンクロマトカラムなど、殆どの分離モードは既に揃っている。通液性能を改良しただけでは、HApとして優位な部分が少ない。前述したように、「最後の分離手段」にしかならない。そこで、生体親和性が高く、吸着剤としてのモードもはっきりしていることからHAp表面の吸着特異性を利用して、新規な固相反応剤として応用する方法を検討した。
針状HApへのタンパク質などの吸着傾向は、Table 6に示す

Scheme.3 Solid phase synthesis on HAp

ようであり、この吸着力の差を利用して、HAp表面で、固相反応＝生体高分子の吸着を利用した他の物質との複合化が出東亞合成研究年報

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4.1.1

実験（1）原材料
標識酵素：SH化したホースラディシュパーオキシデース（以下SH-HRPO）
サンプル：抗マウスIgG（ラビット）含有腹水（このIgGが被標識化抗体となる）。
架橋剤：N（4-Maleimidobutyryloxy）
succinimide（DOJIN製
以下GMBS。
）
HAp：1cmφカラムに針状HAp5mlを充填（2）固相合成①抗体含有液10μlを10mM-PBS、pH6.8（以下Ａ液）で10倍に希釈した。予めA液で平衡化したHAp充填カラムに添加した。
②Ａ液で洗浄し、雑たん白を除去。平衡化した。
③アセトニトリルにGMBSを10％溶解させた溶液をA液で3倍に希釈した後、カラムに添加した。
④カラム上下とペリスタポンプをチューブで接続し、室温で30分循環した（流速2ml/分）。

Fig.10 Chromatogram of HRPO-labeled antibody（commercial）⑤チューブを外し、A液でカラムを洗浄し、未反応物を除去した。
⑥SH-HRPOを添加し、④と同様にして2hrs.循環した。

ロマトグラムの初期に見られる溶出ピークでは酵素活性が認⑦再度、A液で洗浄、平衡化後、300mM−PBSを用いてめられたのに対し、抗体活性は認められなかった。即ち未結リニアグラジエント法で溶出した。

合の酵素が不純物として存在することが分かった。標識化抗（3）反応性の測定

体中に未反応の酵素が存在すると、抗原活性を測定する場合

EIA法を用い、溶出液の各フラクションの抗体活性と、酵素において、バックグランドとなり、高精度の測定を阻害する活性（反応性）を測定した。

要因となる。以上の結果から、HApを用いた固相合成法が有意であるといえる。

4.1.2

結果と考察

Fig.9に各フラクションの酵素活性及び抗体活性を示した。

4.2 蛍光標識化抗体の合成反応のピークが一致しており、IgGが全量、酵素標識化されてFluorescein isothiocyanate，isomerⅠ（以下FITCと略す）は、いることを確認した。参考としてFig.10に市販品の酵素標識目視で確認できる蛍光標識としてよく知られいる。FITCを標化抗体をHApカラムでエリューションした結果を示した。ク

識に用いた場合にも、固相法により標識化抗体が合成できるか検討した。
4.2.1

実験

（1）原材料
標識：FITC蛍光標識（DOJIN製）
抗体：Human‐ミエローマIgG（DEAE精製品）（2）実験
4.1.1と同様に針状HAp表面で蛍光標識化抗体を固相合成した。
（3）溶出パターンの測定
OD280nmでFITC-抗体複合体のカラム溶出パターンを測定した。
試験中のカラムの着色を観察した。
Fig.9 Chromatogram of HPRO-labeled antibody

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4.2.2

結果と考察

Scheme 4にカラムの変化を示した。Fig.11下段にカラム溶出パターンを示した。カラム全体がFITC添加により全体に黄色く着色していくが、10mM-PBS洗浄後は、カラム上部のみが黄色くなっていることがわかった。この着色物を溶出した
ところEIA法でIgGであることが確認された。以上からカラム中では、未反応のFITCは除去され、HApに吸着したIgGのみと反応していることが判った。
IgG Adsorption

FITC
addition

purification

elutionScheme.4 Column of solid phase synthesis: FITC: IgG: FITC-labeled IgG

Scheme.5 Solid phase reaction on HAp

4.3.1

実験

（1）原材料抗体：Human-ミエローマIgG
pepsin：DOJIN製
酢酸ナトリウム：SIGMA製（2）消化①Human-ミエローマIgG10mgを10mM-PBS、pH6.8（以下A液）で10mlに溶解した。予めA液で平衡化したHAp充填カラムに添加した。
②HAp充填カラムをＡ液で洗浄し、雑たん白を除去。平
衡化した。
③更にカラムを0.1M‐酢酸ナトリウム（pH4.5)で平衡化した。
④カラム溶液内が0.1M‐NaClとなるように塩化ナトリウ
ムを添加。

Fig.11 Chromatogram of FITC-labeled IgG⑤pepsin 1.0mgをA液に1mlに溶解させ、カラムに添加。カ
4.3

IgGのペプシン消化（分解）ラム上下とペリスタポンプをチューブで接続し、室温

一般に、IgGは、種に特異的なFc部分と、抗原に対して特で30分循環した（流速2ml/分）。

異的なF（ab ）2部分からなるといわれている。またFc部分はペ⑥37±1℃に保持し、24時間反応させた。

プシンにより消化される事が知られている。このペプシンに⑦チューブを外し、A液でカラムを洗浄した。

よる消化がHApの固相上で行えるか検討した。その分解過程⑧200mM-PBSでグラジエント溶出する。

をScheme 5に示した。この仮定が正しければ、針状HApは（3）分析

固相合成の反応場としてだけでなく、分解反応場としても応・クロマト溶出パターンを同じカラムで、分解前のIgGと用できると考えられた。

比較した。
・SDS-PAGEで分子量を調べた（2ME無添加）。

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4.3.2

結果と考察
6 おわりにFig.12にIgGのクロマトパターンとSDS-PAGEを示した。分
解反応物BのSDS-PAGEには、IgG分子量150Kが見られず、分筆者の都合により引用できなかった文献が多数あることを子量110Ｋの物質が確認された。F（ab ）2の分子量は110Ｋであお詫び致します。また本研究にあたり、懇切丁寧なご指導をる為、ＢはF（ab ）2であると考えられた。以上より、HApを固して頂き且つ貴重なサンプルをお分け頂いた名古屋市立大学相に用いた分解反応も可能であるといえた。

第2生化学教室国松己歳先生、ならびに研究室の方々、また（更に、F（ab ）2は、HApカラム上でFabに分解でき、そのHApの合成ならびに分析にご助言頂いた名古屋工業大学物質13）

まま酵素標識化出来る事も確認した ）工学専攻鈴木傑先生、更に手前勝手な研究を続けさせて頂いた関係各位に深謝致します。
引用文献
1）H.Hirano,T.Nishimura,T.Iwamura,Agric.Biol.Chem.,50(1),219(1986).
2）A.Tiselius,S.Hjerten,O.Levin,Archives of Biochemistry andBiophysics.,65, 155(1956).
3）D.M.Kay，R.A.Young and A.S.Posner：Nature ,204, 1050
(1964).
4）高木 修，加藤ゆかり，井上英武，第6回アパタイト研究会
要旨集， 22(1990).
Fig.12 HAp Column chromatogram of IgG and F（ab'）
2（Mouse,monoclonal antibody）

5）門間英毅、金沢孝文，日化要旨集，339.(1972).
6）金沢孝文，梅垣高士，門間英毅，セラミックス，10，461.(1975).

5 結 言7）大垣政子，名古屋工業大学大学院物質工学専攻修士論文

これまでの検討で、以下のことが判った。

(1996).

（1）針状HApは、従来の板状HApと大きく異なるタンパク質8）佐藤満雄，関根丈司，第６回アパタイト研究会要旨集，の吸着溶出挙動を示す。

p.20，21(1990).

（2）針状Hapの吸着溶出挙動は、HApの加熱条件を調節するこ

9） ファインセラミックス事典 ，技報堂出版，524(1987).
10）高木 修，国松己歳， 第68回日本生化学会大会発表抄録とにより、変化させられる。また、板状HApより炭酸化し集，67，878(1995).

易い。

11）渡部慶一，中根一穂編， 酵素抗体法 ，改定3版，1，学際（3）針状HApは、pH依存性などからイオン交換的、あるいは企画(1995).

電気親和的にタンパク質を吸着溶出することが判った。

12）石川栄治，河合忠，宮井潔， 酵素免疫測定法 第3版，医これは、板状HApと同じ傾向である。

学書院(1987).

（4）針状HApは多孔質であるので、高通液性が得られ、使い

13）高木 修，国松己歳， 第70回日本生化学会大会発表抄録集

易く、吸着量が多いので、カラム充填剤として、有用で(1997).

ある。
（5）針状HApの吸着性を利用して固相反応が行えることが分かった。反応としては、複合化、分解の両方が可能であった。

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