ISSN 1347−6602

昭和62年６月９日学術刊行物認可

家畜衛生学
家畜衛生 学 雑 誌
The Japanese Journal of Animal Hygiene

日本家畜衛生学会
Vol .45 No.4
2020. MAR.

The Japanese Society ofAnimal Hygiene

家

畜

衛

生

学

雑

日本家畜衛生学会

発行

誌

理 事 長：河合一洋
副理事長：樋口豪紀
編集委員長：長井誠

編集委員：末吉益雄・髙井伸二・宮﨑茂

野上貞雄・福士秀人"""""""""""""""""""""""""""""""""""""""""""The Japanese Journal of Animal Hygiene
Published by the Japanese Society of Animal Hygiene
President : Kazuhiro KAWAI（）

Vice President : Hidetoshi HIGUCHI（
Editor-in-Chief : Makoto NAGAI（
Editorial Board : Masuo SUEYOSHI（
Shinji TAKAI （

）
）
）

）

Shigeru MIYAZAKI（
Sadao NOGAMI（
Hideto FUKUSHI（））

複写される方へ
日本家畜衛生学会は有限責任中間法人 学術著作権協会（学著協）に複写に関する権利委託をしていますので，本誌に掲載された著作物を複写したい方は，学著協より許諾を受けて複写して下さい．但し，社団法人日本複写権センター（学著協より複写に関する権利を再委託）と包括複写許諾契約を締結されている企業の社員による社内利用目的の複写はその必要はありません．
（※社外頒布用の複写は許諾が必要です．）
権利委託先：

有限責任中間法人 学術著作権協会〒107−0052 東京都港区赤坂９−６−41 乃木坂ビル３階
電話：03−3475−5618
FAX：03−3475−5619
E-mail：info@jaacc. jp

注意：複写以外の許諾（著作物の転載・翻訳等）は，学著協では扱っていませんので，直接日本家畜衛生学会へご連絡下
さい．
［電話：042−367−5780］
また，アメリカ合衆国において本書を複写したい場合は，次の団体に連絡して下さい．
Copyright Clearance Center, Inc.
222 Rosewood Drive, Danvers, MA 01923 USA
Phone：1−978−750−8400
FAX：1−978−646−8600）

「家畜衛生学雑誌」第45巻第 4 号の送付にあたって
会員の皆様におかれましては，ますますご清栄のこととお慶び申し上げます．ここに，「家畜衛生学雑誌」第45巻
第 4 号を刊行する運びとなりました．本号では，原著論文 1 編及び短報 1 編を掲載しています．
本誌では，原著論文・短報以外にも，総説，数ページ程度のミニレビュー，技術資料等の原稿を受け付けておりま
すので，会員の皆様の積極的なご投稿をよろしくお願い致します．ご不明な点は遠慮なく編集委員会事務局へお問い
合わせください．
日本家畜衛生学会
家畜衛生学雑誌

理事長

河合一洋

編集委員長

長井

誠



家畜衛生学雑誌の32巻 1 号（2006年）以降のバックナンバーについて
これまでの家畜衛生学雑誌の32巻 1 号（2006年）以降のバックナンバーについて，保管場所が確保できない
ことから各号の何冊かを保管し残りを廃棄しようと考えています．つきましては，会員の皆様でほしい冊子がありましたら送料着払いで差し上げようと思いますので，ご興味のある会員は 3 月31日までに 事務局の方にお問い合わせください．よろしくお願い申し上げます．



日本家畜衛生学会・学会費納入のお願い
ご承知のように，学会は会員の皆様からの会費をもって運営されております．学会の運営を円滑に運ぶために，所定の会費を納入していただきますようお願い致します．
＊会費は，正会員5,000円，学生会員2,000円です．
＊平成27年度までの未納分をお支払いいただく場合，正会員年会費は4,000円です．
日本家畜衛生学会

払

※

3

※

4 3 1 7 1

2017

2018

2019

欄

0 0 2 4 0※3※

4 3 1 7 1※

日本家畜衛生学会

千

百

十

万

千

百

十

円

おなまえ

※

様
料

（消費税込み）

金

）

※

※

ご 依 頼 人−

受付局日附印

ご依頼人

特殊取扱

これより下部には何も記入しないでください。

円

額

信

様

おなまえ

−

十

）

）

（電話番号

百

取扱

円

裏面の注意事項をお読みください。

千

年度

計

−

万

特殊

（

おところ（郵便番号※

十加入者名 金2016

百記載事項を訂正した場合は︑その箇所に訂正印を押してください︒

2015

千

※

河合一洋

郵便振替払込請求書兼受領証

切り取らないで郵便局にお出しください︒

日本家畜衛生学会

票

金

※

扱

口座番号
（右詰めで記入）※

通各票の※印欄は︑ご依頼人において記載してください︒

加入者名

0 0 2 4 0取

口座記号番号

口座記号

※

込

金 額 料

00

理事長

円

受付局日附印（ご注意）
・この用紙は、機械で処理します
ので、口座番号及び金額を記入する際は、枠内にはっきりと記入してください。
また、本票を汚したり、折り曲
げたりしないでください。

・この払込請求書を郵便局の派遣員にお預けになるときは、引換えに預り証を必ずお受け取りください。

この受領証は、郵便振替の払込
みの証拠となるものですから大切に保存してください。

この払込取扱票の裏面には、何も記載しないでください。

家畜衛生学雑誌
第45巻
目

第4号

2020

次

〈原著〉
Clinical efficacy of injectable gamithromycin solution for bacterial bovine respiratory disease anddrug susceptibility of isolates･････････････････････････････ Toshihide Kato・Masaru Ishida・Mitsugi Ito・Ken-ichi Shibano･･･････････････････････ 147～154〈短報〉
日本における家畜バイオマス重量あたりの抗菌剤販売量（続報）･･････････････････････････････････････････････････････････････････････････ 高木弘子・雷志皓・杉浦勝明･･･････････････････････ 155～161

第45巻総目次 ････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････ 163〜166
会員へのおしらせ ･･････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････ 167〜168
第12回動物用ワクチン−バイオ医薬品研究会シンポジウムについて
家畜衛生学雑誌投稿規程
日本家畜衛生学会会則･･･････････････････････････････････････････････････････････････ 169･････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････ 170〜171････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････ 172〜173

家畜衛生学雑誌

The Japanese Journal of Animal HygieneVol. 45  No. 4

2020

Contents〈Original report〉
Clinical efficacy of injectable gamithromycin solution for bacterial bovine respiratory disease anddrug susceptibility of isolates････････････････････････････････････････････････････････････････････ Toshihide Kato et al.･･･････････････････････････････････････････ 147〜154〈Note〉The updated evaluation of veterinary antimicrobial use in the food-producing animals in Japan･････････････････････････････････････････････････････････････････････ Hiroko Takagi et al.･･･････････････････････････････････････････ 155〜161
Contents of volume 45 ･･････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････ 163〜166
Information for Members ･･････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････ 167〜168
Instruction for Authors ･････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････ 170〜171
The Regulations of The Japanese Society of Animal Hygiene ･･････････････････････････････････････････････････････････････････ 172〜173

Jpn. J. Anim. Hyg.

147

Original report

Clinical efficacy of injectable gamithromycin solution for bacterial bovine
respiratory disease and drug susceptibility of isolates
Toshihide Kato 1, 2）＊ , Masaru Ishida 3）, Mitsugi Ito 4）, Ken-ichi Shibano 5, 6）

細菌性牛呼吸器病に対するガミスロマイシン注射剤の臨床効果と分離菌の薬剤感受性
加藤敏英 1 ， 2 ）＊・石田

優 3 ）・伊藤

貢 4 ）・芝野健一 5 ， 6 ）（1）Central Livestock Clinic, Yamagata PFAMAA, 286-1 Nanaura, Yamagata 990-2171, Japan
2)
School of Veterinary Medicine, Rakuno Gakuen University,
582-1 Bunkyodai-midorimachi, Ebetsu, Hokkaido 069-8501, Japan
3）
Shibestu Animal Hospital Co., LTD., 15-sen, Shibetsu, Hokkaido 095-0371, Japan
4）
Akabane Animal Clinic Co., LTD., Akabane-cho, Tawara, Aichi 441-3502, Japan
5）
Tanba Livestock Clinic, Hyogo Prefectural Federation of Agricultural Mutual Aid Associations,3405-1 Kashiwabara Kashiwabara-cho, Tanba 669-3309, Japan
6）
Faculty of Veterinary Medicine, Imabari Campus, Okayama University of Science,
1-3 Ikoinooka, Imabari, Ehime 794-8555, Japan＊
Corresponding author: Toshihide Kato (ktoshi@rakuno.ac.jp)）（Received 24. Nov. 2019／ Accepted 7. Jan. 2020）

Summary
In the present study, we examined the clinical efficacy of injectable gamithromycin (GAM) solution for bovine
respiratory disease caused by bacteria and to clarify the associated microbial susceptibility of pathogens. Cattle
were randomly assigned to receive a single subcutaneous injection of 6 mg/kg of GAM (n＝121) or 10 mg/kg oftilmicosin (TMS, n＝124). The efficacy was judged based on the symptoms at 3 and 10 days after the treatment.
Nasal swab tests were performed to identify pathogens. The clinical efficacy of GAM was 72.5 and 89.2% at 3 and
10 days, respectively, and was equivalent to that of TMS (64.5 and 83.1% at 3 and 10 days, respectively). There wereno adverse events due to either administration. Pasteurella multocida (31.4%, 77/245) and Mycoplasma bovis (19.2%,
47/245) were isolated from the nasal swabs collected prior to the treatment. In the antimicrobial susceptibility test,
the minimum 50 and 90% inhibitory concentrations (MIC50 and MIC90) of GAM were 0.5 and 4 µg/mL for
P. multocida, and 8 and 32 µg/mL for M. bovis, and the MIC50 and MIC90 of TMS were 4 and 32 µg/mL for
P. multocida, and >128 µg/mL for M. bovis, respectively. Our findings suggest that injectable GAM solution is aneffective treatment option for bovine respiratory disease caused by bacteria.
Key words：Bacterial bovine respiratory disease, Drug susceptibility, Gamithromycin, Macrolide antibiotics,
Therapeutic efficacy
  家畜衛生学雑誌
山形県農業共済組合連合会中央家畜診療所〒990−2171 山形市七浦字北川原286− 1
2）
酪農学園大学獣医学群獣医学類〒069−8501 江別市文京台緑町582
3）㈲士別動物病院〒095−0371 士別市上士別町15線
1）

45，147〜154（2020）㈲あかばね動物クリニック〒441−3502 田原市赤羽根町石添555）兵庫県農業共済組合連合会丹波診療所〒669−3309 丹波市柏原町柏原3405− 1
6）岡山理科大学獣医学部獣医学科〒794−8555 今治市いこいの丘 1 − 3＊
連絡著者：加藤敏英（ktoshi@rakuno.ac.jp）
4）Jpn. J. Anim.Hyg. Vol. 45, No.4（2020）

148

Introduction

crossbreeds (Japanese Black×Holstein), and did notreceive any antibiotics during a 30-day period prior to

Bovine respiratory disease develops as a result of

the study. The cattle were randomly assigned tocomplex infections caused by a variety of pathogens,receive either GAM (ME4132, Meiji Seika Pharma, Ltd.

including viruses and bacteria. Factors contributing toTokyo, Japan) (n＝121) or tilmicosin (TMS; Micotil 300,

such infections include transportation of the animals, as

Nippon Zenyaku Kogyo Co. Fukushima, Japan)

well as the increased density and number of cattle in(n＝124) at each of the farms according to pre-rearing groups due to the expanded capacity of farms.

determined randomization charts. Cattle in the GAM

Young cattle, including suckling calves, are mostgroup were considered test subjects and those in thefrequently affected by respiratory disease. Several

TMS group were considered control subjects. A single

antibiotics are used to treat cattle that are infected

dose of GAM (6.0 mg/kg) or TMS (10.0 mg/kg) waswith bacteria, such as Mycoplasma, and a number of

injected subcutaneously, and no other drugs werestudies have been conducted worldwide to test theadministered during the study period. There were nosusceptibility of these bacteria to different antibiotics

significant differences between the two groups into evaluate their clinical effects 5, 11, 12, 13, 19, 20). Recent

terms of the species, sex, age (GAM: 1-13 month-old,studies demonstrated that although Mycoplasma ismean ± SD＝3.6 ± 3.1; TMS: 0-19 month-old, 3.2 ±known for its high sensitivity to macrolide antibiotics,

3.1), and body weight (GAM: 30-350 kg, 126.9 ± 90.0;

there are many species of Mycoplasma that have a low

TMS: 38-410 kg, 114.4 ± 89.4) (Student’s t-test). Cattle

sensitivity to macrolide antibiotics 2, 6, 8, 11, 22). On thewere excluded if they had received a vaccine forother hand, several studies conducted outside of Japan

bacterial disease within 6 months prior to the study orfound that two 15-membered macrolide antibiotics,

if they received anti-inflammatory drugs within 7 days

tulathromycin (TUL) and gamithromycin (GAM), areprior to the study. The study was performed in

effective for preventing and treating bovine respiratory

accordance with the standards of the Researchdisease1, 7, 17, 18, 21). Although some previous studies

examined bacterial susceptibility to 14- andInstitute for Animal Science in Biochemistry and
Toxicology (Study ID: 08-055).

16-membered macrolide antibiotics and demonstrated
clinical efficacy 9, 11, 12, 22), no studies have been conductedin Japan to examine the effects of 15-membered

Efficacy of the antibiotics
Experiments were performed following themacrolide antibiotics. Thus, it is important to examine

Ministerial Ordinance on Standards for Practice ofthe susceptibility of bacterial species isolated in Japan

Clinical Trials on Veterinary Medicinal Products

to 15-membered macrolides to clarify their clinical(Ordinance No.32 of the Ministry of agriculture,efficacy. In this context, we performed bacteriological

Forestry and Fisheries in 2005) and standards of

examinations using nasal swabs from cattle that wereclinical study developed by the Japanese Society ofdiagnosed with bovine respiratory disease in 5

Antimicrobials for Animals 10). The following variables

prefectures in Japan, and treated these cattle with

were examined from day 0 (start of the treatment) to

injectable GAM solution to examine the treatment

day 3, and on day 10: body temperature, appetite,

response.

activity, coughing, nasal discharge, breathing pattern,

Materials and Methods
Study period, location, and subjects

and respiratory sounds. Each variable was scored as
normal (0), mild (1), moderate (2), severe (3), or
extremely severe (4), and percent changes from the

The study was conducted between January andbaseline score (day 0) to the post-treatment score (dayOctober 2009 at a total of 6 facilities in Hokkaido,

3 ＋d a y 1 0 ) w e r e c a l c u l a t e d a s a m e a s u r e o f

Yamagata, Aichi, Hyogo, and Kumamoto prefectures.

improvement of clinical symptoms. The efficacy of

The study subjects were 21-day to 15-week-old cattle

antibiotics was determined based on the percent(n＝245) with bovine bacterial respiratory disease.

changes in each individual animal: remarkably effective

These cattle were Japanese Black, Holstein, or F1(85-100%), effective (70-84%), ineffective (< 70%). When

Toshihide Kato et al.：CLINICAL EFFECTS OF GAMITHROMYCIN FOR BRD

149

symptoms related to pneumonia did not improved orreaction (PCR) 3, 14). The antimicrobial susceptibility ofworsened after administration, alternative treatments

the bacterial species was based on the minimum

were applied and these cases were no longer scored.

inhibitory concentration (MIC) of the antibiotics, as well

Efficacy rates were calculated in each group using theas on the concentration of antibiotics required tofollowing formula.   Efficacy rates (%)＝(Number ofinhibit 50 and 90% of bacterial growth (MIC 50 andremarkably effective ＋ Number of effective) ／ (Number

MIC90, respectively). The MIC was determined by theof animals evaluated)×100 .   The efficacy rate of 70%

agar dilution method as per the standard method

or higher was considered effective.

proposed by the Clinical and Laboratory Standards
Institute 4). The following antibiotics were tested: GAM,

Evaluation of the safety of the antibiotics
The safety of the antibiotics was determined based

TMS, enrofloxacin (ERFX), kanamycin (KM), ampicillin(ABPC), tylosin (TS), and florfenicol (FF).

on the observation of adverse events. Worsening of
respiratory symptoms was not considered as anadverse event.

Detection of viral antibodies
Blood was collected from the jugular vein of thecattle prior to and 21 days after the administration ofBacteriological examinations

antibiotics. The antibody titer was measured in the

Nasal swabs were collected from both nasal cavities

serum for the following viruses: parainfluenza 3 virus

using two 30-cm sterile cotton swabs prior to and 10(PI3V), adenovirus type 7 (Ad7V), bovine viral diarrhea

days after the administration of the antibiotics.

virus (BVDV), bovine respiratory syncytial virus

Bacterial isolation was performed targeting the(BRSV), and infectious bovine rhinotracheitis virus

following species: Pasteurella multocida, Mannheimia(IBRV). The hemagglutination inhibition antibody titerhaemolytica, Histophilus somni, Mycoplasma bovis, andwas measured for PI3V and Ad7V, and the

Mycoplasma bovirhinis. Immediately after the sample

neutralizing antibody titer was measured for BVDV,

collection, one of the swabs was immersed into Cary-

BRSV, and IBRV.

Blair medium. The other swab was first preserved in
GS broth medium, refrigerated, and transferred to theStatistical analysis

Research Institute for Animal Science in Biochemistry

All statistical analyses were performed using

and Toxicology. After the transfer, P. multocida, M.

STATISTICA 2000 (Release 5.5). For all tests, a P-value

haemolytica, and H. somni were isolated by firstof <0.05 was considered to indicate a significant

applying the swabs onto Columbia agar supplementeddifference.

with 5% horse blood (Columbia blood agar, OXOID),
and incubating the agar plates in 5% CO 2 at 35℃
overnight. Isolated colonies were further grown on the

Results
Efficacy of the antibiotics

Columbia blood agar and characterized by Gram

There was no significant difference between thestaining. Furthermore, oxidase (pourmedia oxidase test,

groups in any of the clinical variables compared at

Eiken Chemical Co., Ltd, Tokyo, Japan) and indole tests

baseline. One cow in the GAM group was excluded

were performed; the latter was performed usingfrom the analysis as it was sold 2 days after

Kovac’s reagent manufactured in-house. Bacterial

administration of the antibiotic. The proportions ofspecies were finally identified using the BD BBL TM

cattle for which the antibiotics were remarkablyTMidentification system (Becton, Dickinson andeffective, effective, and ineffective were as follows: 62.5

Company Japan, Tokyo, Japan). To isolate M. bovis and(75/120), 10.0 (12/120), and 27.5% (33/120) for GAM on

CrystalM. bovirhinis, the bacterial cultures were firstday 3, 48.4 (60/124), 16.1 (20/124), and 35.5% (44/124) for

incubated in Hayflick agar supplemented with Tween

TMS on day 3, 80.0 (96/120), 9.2 (11/120), and 10.8%

80, and Hayflick and GS broth media for 2-4 days in 5%(13/120) for GAM on day 10, and 67.7 (84/124), 15.3

CO 2 at 37℃. Isolated colonies were then examined(19/124), and 16.9% (21/124) for TMS on day 10,

using the film spot test followed by polymerase chain

respectively. Thus, the calculated clinical efficacy ofJpn. J. Anim.Hyg. Vol. 45, No.4（2020）150

the antibiotics on day 3 was 72.5 (87/120) and 64.5%

respectively, with no significant difference between the(80/124) in the GAM and TMS groups, respectively,

groups (chi-square test). P. multocida was isolatedwith no significant difference between the groups.

most frequently, in 35.5 (43/121) and 27.4% (34/124) of

Similarly, the difference in the clinical efficacy of thethe cattle in the GAM and TMS groups, respectively.

antibiotics was not significant on day 10, at 89.2

This was followed by M. bovis, which was isolated in(107/120) and 83.1% (103/124) in the GAM and TMS

21.5 (26/121) and 16.9% (21/124) of the cattle in the
GAM and TMS groups, respectively, and M. bovirhinis,

groups, respectively (Table 1, chi-square test).

which was isolated in 17.4 (21/121) and 13.7% (17/124) of
Safety of the antibiotic treatments

the cattle in the GAM and TMS groups, respectively.

Mild and localized swelling and induration at the

In both groups similar bacterial species were also

injection site were observed in some subjects during

isolated 10 days after the administration of thethe study period. However, there were no otherantibiotics but the isolation rate of more than one

adverse events due to the administration of thebacterial species at day 10 was lower than that at day
0 in GAM treated group. H. somni was not isolated in

antibiotics.

either of the groups pre- or post-treatment (Table 2).  
Bacteriological examinations

There observed no differences in the isolation rate on
day 10 between the two groups in which thePrior to administration of the antibiotics, at least one
bacterial species was isolated in 60.3 (73/121) and 46.8%

antibiotics were effective or not effective (data not(58/124) of the cattle in the GAM and TMS groups,

shown).

Table 1.  Comparison of the clinical effects 3 and 10 days after drug administration
GAM (n ＝120)

Effectsday 3†

TMS (n ＝124)

day 10

day 3

day 1096 (80.0)60 (48.4)

84 (67.7)

Remarkably effective

75 (62.5)

Effective

12 (10.0)

11

(9.2)

20 (16.1)

19 (15.3)

87 (72.5)

107 (89.2)

80 (64.5)

103 (83.1)

33 (27.5)

13 (10.8)

44 (35.5)

21 (16.9)

Clinical efficacy‡

Ineffective†‡

Number (%)
Sum of "remarkably effective" and "effective" cases

Table 2.  Number of cattle from which bacterial species were isolated from nasal swabs
Isolated species †day 0 (n ＝121)‡

TMS groupday 10 (n ＝112)

day 0 (n ＝124)

day 10 (n ＝110)

18 (16.1)

34 (27.4)

20 (18.2)

P. multocida

43 (35.5)

M. haemolytica

5 (4.1)1 (0.9)1 (0.8)2 (1.8)

H. somni

0 (0.0)0 (0.0)0 (0.0)0 (0.0)

M. bovis

26 (21.5)

24 (21.4)

21 (16.9)

21 (19.1)

M. bovirhinis

21 (17.4)

17 (13.7)

10 (9.1)

58 (46.8)

45 (40.1)

more than one species†

GAM group73 (60.3)

14 (12.5)
a49 (43.8)a P. multocida; Pasteurella multocida, M. haemolytica; Mannheimia haemolytica, H. somni; Histophiluis somni, M. bovis; Mycoplasma bovis,
M. bovirhinis; Mycoplasma bovirhinis‡
Number (%)
a-a ; P ＜0.05

Toshihide Kato et al.：CLINICAL EFFECTS OF GAMITHROMYCIN FOR BRD

151

Antimicrobial susceptibilities were evaluated for the

TMS were both >128 µg/mL. The MIC50 and MIC90 of

isolates on day 0. The MIC50 and MIC90 of GAM andanother macrolide antibiotic, TS, for M. bovis were 32

TMS for P. multocida were 0.5 and 4 µg/mL, and 4

and 64 µg/mL, respectively (Table 3). We did notand 32 µg/mL, respectively. The MIC50 and MIC90 ofperform the susceptibility test for M. bovirhinis.

ERFX and ABPC were lower than those of the otherDetection of viral antibodies

three antibiotics; the MIC50 was less than 0.063 µg/mL
for both ERFX and ABPC, and the MIC90 of ERFX and

The number of animals whose antibody titers to

ABPC was 0.125 and 0.25 µg/mL, respectively.

specific virus increased more than 4-fold was small,M. haemolytica was as sensitive to these antibiotics assuggesting the role of virus in the development of

P. multocida (data not shown). The MIC50 and MIC90 of

respiratory symptoms in this study was low (Table 4).

GAM for M. bovis were 8 and 32 µg/mL and those of

Table 3.  Antimicrobial susceptibility of Pasteurella multocida (n ＝77) and Mycoplasma bovis (n ＝47)
Bacteria

Antibiotic †P. multocida

GAM

Minimum inhibitory concentration (MIC) (µg/mL)≤ 0.063 0.125
12 ‡

7

TMS
ERFX

69

0.25

0.5

1

2

4

8

15

16

10

4

11

2

4

3

3

8

31

12

1

5

M. bovis

63

6

1

GAM

4

1

2

1 2)

1

5

19

14

8

TS
ERFX

8

10

6

FF
‡

64

128

>128

14

34

15

2

9

MIC50

MIC90

0.5

4

4

32

≤ 0.063

0.125

16

>128

≤ 0.063

0.25

8

32

3

6

2

1

1

1

5

39

>128

>128

3

18

17

6

1

2

32

64

TMS

†

2

32

7

KM
ABPC

16

1

5

6

4

7

1

32

2

12

22

10

1

8

16

GAM: gamithromycin, TMS: tilmicosin, ERFX: enrofloxacin, KM: kanamycin, ABPC: ampicillin, TS: tylosin, FF: florfenicol
Number of isolates

Table 4.  Antibody titer and the number of cattle whose antibody titer increased by at least 4-fold after administrationof antibiotics (day 0 vs. 21)
GAM group
day 0(n ＝118)

day 21(n ＝116)

Number of cattle
(%) ‡

day 0
(n ＝121)PI-3

9.7 ± 2.8 §8.9 ± 2.3

7 (6.0)11.2 ± 3.3
A10.9 ± 3.3

Ad-710.1 ± 2.9

10.1 ± 3.1

7 (6.0)

BVDV

204.7 ± 7.0

203.8 ± 6.3

22 (19.0)

275.7 ± 6.2

BRSV18.2 ± 6.4

25 (21.6)

25.2 ± 6.4

IBRV†

TMS group

Virus †

1.3 ± 4.3

20.3 ± 5.4c1.0 ± 3.5d

10 (8.6)

1.9 ± 5.2

day 21(n ＝119)

Number of cattle(%)

10.3 ± 3.0a8.7 ± 2.7

11 (9.2)b305.5 ± 5.3

27 (22.7)

24.9 ± 5.2
a1.3 ± 3.8

1 (0.8) B
23 (19.3)b

9 (7.6)

 PI- 3 : parainfluenza 3 virus (PI3V), Ad- 7 : adenovirus type 7, BVDV: bovine viral diarrhea virus, BRSV: bovine respiratory syncytial virus, IBRV:
infectious bovine rhinotracheitis virus‡
 Number of cattle whose antibody titer increased by at least 4-fold after administration of antibiotics (day 21) compared with pre-treatment (day 0)   
§Mean±SD
Significant difference between groups: A-B; P ＜0.05 (Fisher's exact test), Significant differences in each group; a-b; P ＜0.01, c-d; P ＜0.05 (t-test)

Jpn. J. Anim.Hyg. Vol. 45, No.4（2020）

152

Few studies conducted outside of Japan have

Discussion

examined the susceptibility of M. bovis to GAM.

Tennant et al. 18) found that the incidence of bovine

Gautier-Bouchardon et al. 6) examined the antimicrobial

respiratory disease and mortality was significantly

susceptibility of M. bovis isolates in France and foundreduced in feedlot cattle by using TUL and TMS as

that no differences were observed in MIC values ofprophylactics. This study further demonstrated that

GAM between isolates in 1978-79 and those in 2010-12

the treatment was effective in fattening the cattle,

showing MIC50 of 128 µg/mL.

thereby making the rearing process more economic.

The MIC50 and MIC90 of GAM for M. bovis in our

1)study were lower than those reported in this study.

compared the effects of GAM with saline to prevent

But the MIC of GAM for M. bovis will likely increase if

respiratory diseases in 798 young cattle over a 14-day

its use for bovine bacterial respiratory disease becomes

Similarly, a study conducted by Baggott et al.

period. GAM successfully prevented the occurrence ofmore prevalent in Japan. On the other hand, cattle

respiratory disease in 86% of the cattle compared with

with M. bovis has been treated successfully with TMS

61% by saline. Torres et al. 20) compared the efficacy ofdespite its high MIC for the organisms suggesting

GAM and TUL, and concluded that the efficacy of

antimicrobial susceptibility may not always correlate

GAM did not differ from that of TUL, although calves

with the efficacy of the antibiotic 15, 16).

administered GAM had a higher morbidity rate than

However, antimicrobial susceptibility is an important

did calves administered TUL. There are a number ofobjective index of the efficacy of antibiotics and should

studies outside of Japan that have examined the

be monitored over time.

clinical efficacy of 15-membered macrolide antibiotics,

Acknowledgment

but none have been reported from Japan. Many of thestudies performed outside of Japan examined thetreatment effects of antibiotics in terms of their

We would like to thank Meiji Seika Pharma, Ltd. forproviding the injectable GAM for this study.

prophylactic activity; however, prophylactic treatment

Referenceswith antibiotics is generally not permitted in Japan.
We therefore examined the clinical efficacy of GAM for

1)

Baggott D, Casartelli A, Fraisse F, et al. (2011)

bovine respiratory disease by administering GAM as a

Demonstration of the metaphylactic use of

single subcutaneous injection and comparing its effects

gamithromycin against bacterial pathogens

with those of TMS, which is a 16-membered macrolide

associated with bovine respiratory disease in a

antibiotic used widely in clinical practice.

multicentre farm trial. Vet Rec 168, 241.

The role of virus in the respiratory disease in thisstudy was considered low since in only small number

doi:10.1136/vr.c6776
2)

Barberio A, Flaminio B, De Vliegher S, et al. (2016)of animals antibody titers to specific virus increased

Short communication: In vitro antimicrobial

more than 4-fold. In addition, we confirmed that thesusceptibility of Mycoplasma bovis isolates

cattle in the present study had bacterial respiratory

identified in milk from dairy cattle in Belgium,

disease because 1) respiratory disease occurred
sporadically in each farm, 2) many of the nasal swabs

Germany, and Italy. J Dairy Sci 99, 6578-6584.
3)

Chávez González YR, Ros Bascuñana C, Bölske G,

contained Pasteurella and/or Mycoplasma, and 3) the

et al. (1995) In vitro amplification of the 16S rRNAadministration of antibiotics rapidly improved

genes from Mycoplasma bovis and Mycoplasma

respiratory symptoms. In the present investigation it
revealed that GAM was as effective (89.2%) as TMS

agalactiae by PCR. Vet Microbiol 47, 183-190.
4)

Clinical and Laboratory Standards Institute. (2012)(83.1%). We did not observe any adverse events related

Methods for dilution antimicrobial susceptibility

to the administration of antibiotics other than mild

tests for bacteria that grow aerobically. Approved

swelling and induration at the injection site. Thesestandard-ninth edition. Clinical and Laboratory

findings suggest that GAM is an effective and safeStandards Institute 32(2), M07-A9.

treatment for bovine bacterial respiratory disease.

5)

DeDonder KD, Apley MD. (2015) A literatureToshihide Kato et al.：CLINICAL EFFECTS OF GAMITHROMYCIN FOR BRD
review of antimicrobial resistance in Pathogens

Mycoplasma bovirhinis, Mycoplasma alkalescens

associated with bovine respiratory disease. Animand Mycoplasma bovigenitalium by PCR. J Vet

Health Res Rev 16, 125-134.
6)

7)

8)

Gautier-Bouchardon AV, Ferré S, Le Grand D, et

Med Sci 60, 1299-1303.
15) Kohno S, Tateda K, Kadota J, et al. (2014)

al. (2014) Overall Decrease in the Susceptibility ofContradiction between in vitro and clinical

Mycoplasma bovis to Antimicrobials over the Past

outcome: Intravenous followed by oral

30 Years in France. PLoS One 9(2), e87672.

azithromycin therapy demonstrated clinical

doi:10.1371/journal.pone.0087672

efficacy in macrolide-resistant pneumococcal

Heins BD, Nydam DV, Woolums AR, et al. (2014)

pneumonia. J Infect Chemother 20, 199-207.

Comparative efficacy of enrofloxacin and16) McClary DG, Loneragan GH, Shryock TR, et al.

tulathromycin for treatment of preweaning(2011) Relationship of in vitro minimum inhibitory

respiratory disease in dairy heifers. J Dairy Sci 97,

concentrations of tilmicosin against Mannheimia

372-382.

haemolytica and Pasteurella multocida and in vivo

Heuvelink A, Reugebrink C, Mars J. (2016)

tilmicosin treatment outcome among calves with

Antimicrobial susceptibility of Mycoplasma bovis

signs of bovine respiratory disease. J Am Vet Med

isolates from veal calves and dairy cattle in the
Netherlands. Vet Microbiol 189, 1-7.
9)153

Assoc 239, 129-135.
17) Nautrup BP, Van Vlaenderen I, Gasper SM, et al.

Hirose K, Kobayashi H, Ito N, et al. (2003) Isolation(2013) Estimating the comparative clinical andof Mycoplasmas from nasal swabs of calveseconomic consequences of tulathromycin for

affected with respiratory diseases andtreatment of present or anticipated outbreaks of

antimicrobial susceptibility of their isolates. J Vet

bovine respiratory disease in feedlot cattle in the

Med B 50, 347-351.

United States. J Anim Sci 91, 5868-5877.

10) Japanese Society of Antimicrobials for Animals.

18) Tennant TC, Ives SE, Harper LB, et al. (2014)(2014) Standard of clinical study on antimicrobials

Comparison of tulathromycin and tilmicosin on thefor veterinary use for treatment of bovine

prevalence and severity of bovine respiratory

bacterial pneumonia. Annual report of thedisease in feedlot cattle in association with feedlot

Japanese Society of Antimicrobials for Animals 36,

performance, carcass characteristics, and economic

55-62.

factors. J Anim Sci 92,5203-5213.

11) Kato T, Endo H, Sakai J. (2013) Antibiotic

19) Thiry J, González-Martín JV, Elvira L, et al. (2014)

Susceptibility of Mannheimia haemolytica,

Treatment of naturally occurring bovine

Pasteurella multocida, Mycoplasma bovis andrespiratory disease in juvenile calves with a single

Ureaplasma diversum Isolates from Nasal Swabs ofadministration of a florfenicol plus flunixin

Clinically Healthy Cattle. J Jpn Vet Med Assoc 66,

meglumine formulation. Vet Rec 174. doi:10.1136/

852-858. (In Japanese with English summary)

vr.10201712) Kato T, Saito M, Shoji K, et al. (2003) Prophylactic20) Torres S, Thomson DU, Bello NM, et al. (2013)  

Efficacy of Enrofloxacin and Tilmicosin on Bovine

Field study of the comparative efficacy ofRespiratory Disease in Newly Arrived Beef Cattle

gamithromycin and tulathromycin for the

Associated with Pasteurella multocida andtreatment of undifferentiated bovine respiratory

Mycoplasma. J Jpn Vet Med Assoc 56, 7-11. (Indisease complex in beef feedlot calves. Am J Vet

Japanese with English summary)

Res 74, 847-853.

13) Klein U, de Jong A, Moyaert H, et al. (2017)21) Torres S, Thomson DU, Bello NM, et al. (2013)

Antimicrobial susceptibility monitoring of

Field study of the comparative efficacy of

Mycoplasma hyopneumoniae and Mycoplasma bovis

gamithromycin and tulathromycin for the control

isolated in Europe. Vet Microbiol 204, 188-193.

of undifferentiated bovine respiratory disease14) Kobayashi H, Hirose K, Worarach A, et al. (1998)

complex in beef feedlot calves at high risk ofIn vitro Amplification of the 16S rRNA Genes fromdeveloping respiratory tract disease. Am J Vet

Jpn. J. Anim.Hyg. Vol. 45, No.4（2020）

154

83.1%）と同等であった．また，薬剤投与に起因する有Res 74, 839-846.
22) Uemura R, Sueyoshi M, Nagatomo H. (2010)

害事象はみられなかった．投与前の鼻腔スワブからは，Antimicrobial Susceptibilities of Four Species of

Pasteurella multocida が 31.4%（77/245），Mycoplasma

Mycoplasma Isolated in 2008 and 2009 from Cattle

bovis が19.2%（47/245）分離された．これらの薬剤感受in Japan. J Vet Med Sci 72,1661-1663.

要

旨性試験では，P. multocida の GAM および TMS に対する
MIC50とMIC90は，それぞれ0.5および 4 µg/mlと 4 および
32 µg/ml，M. bovis の GAM および TMS に対する MIC50

ガミスロマイシン（GAM）注射剤の細菌性牛呼吸器と MIC90は，それぞれ 8 および32 µg/ml と＞128 µg/ml病に対する臨床的有効性を調べるとともに，鼻腔深部かであった．以上のことから，主な原因菌の GAM に対すら分離された原因菌の薬剤感受性を調査した．供試牛をる MIC は TMS よりも低く，治療効果も TMS と同等以無作為に GAM 群（n＝121）とチルミコシン（TMS）群

上で，有害事象も認められなかったことから，GAM 注（n＝124）に分け，それぞれ 6 mg/kg，10 mg/kg を 1 回

射剤は細菌性牛呼吸器病治療薬として臨床的有用性が高皮下注射した．薬剤投与後 3 日と10日に個体ごとの臨床いと評価された．

症状に基づいて効果を評価し，両群の有効率を算出した．
その結果，GAM 群の薬剤投与後 3 日および10日の有効

キーワード：細菌性牛呼吸器病，薬剤感受性，ガミスロ

率 は そ れ ぞ れ72.5% と89.2% で あ り，TMS 群（64.5%，

マイシン，マクロライド系抗菌性物質，治療効果

短

155

報

日本における家畜バイオマス重量あたりの抗菌剤販売量（続報）高木弘子 1 ）・雷志皓 1 ）・杉浦勝明 1 ）＊The updated evaluation of veterinary antimicrobial use in the food-producing
animals in Japan
Hiroko Takagi 1）, Yukihiro Rai 1）, Katsuaki Sugiura 1）＊（1）Global Animal Resource Science, Department of Global Agricultural Sciences, Graduate School of Agricultural and Life Sciences, 1-1-1 Yayoi, Bunkyo-ku, Tokyo 113-8657＊

Corresponding author: Katsuaki Sugiura（aksugiur@mail.ecc.u-tokyo.ac.jp））（2019. 8. 23  受付／2019. 10. 16  受理）

Summary
To update our previous study, which evaluated the sales of antimicrobial agents in beef cattle, dairy cow, pigs
and broilers in Japan from 2005 to 2013, we evaluated the sales of antimicrobials for the years 2014 to 2017 using
data obtained thereafter. The annual sales amount of antimicrobials in active ingredient for food-producing animals
in Japan through years 2014 to 2017 was 611, 622, 647 and 675 metric tons respectively and was on the increase.
The biomass of food-producing animals in Japan was estimated to be around 4 million metric tons using Hosoi
method and 3 million tons in terms of population correction unit (PCU) from 2014 to 2017, with no significant change
from previous years. As a result, the quantities of antimicrobials sold in terms of milligram of active ingredientsold per kg PCU through the years 2014 -2017 were 203, 209,218, 229 mg/kg in all species combined respectively.
The pig sector continued to be the heaviest use of antimicrobials with388~437 mg/kg PCU for these years.
Key words：antimicrobial use, food-producing animals, monitoring, population correction unit  家畜衛生学雑誌
薬剤耐性菌対策のため抗菌剤の慎重使用が求められてあるが，データの入手可能性から米国，カナダなどで採中，家畜における抗菌剤使用量の把握が用されつつある 1 ，9 ，10，16）．また，国際獣疫事務局（OIE）

重要と考えられ，各国で抗菌剤使用量モニタリングシス

においても，同様の方法を用いて加盟国の抗菌剤使用量

テムの構築が進められている．EU では，ヨーロッパ動物のモニタリングシステムの構築が進められている16）．

いる

2 ， 3 ，14，17）

45，155〜161（2020）

用抗菌剤使用量サーべイランス（ESVAC）の下，加盟

筆者らの先行研究13） では，2005年から2013年までの国間の使用量の比較のために，家畜バイオマス重量当た

データを用いて家畜バイオマス重量当たりの抗菌剤販売

りの有効成分販売量重量で比較するという方法が用いら量を解析し，年次間・畜種間の比較を行った．本研究で4）れている ．この方法による使用量モニタリングは，畜は，その後得られた2014年～2017年のデータを用いて，種別の分布や薬剤の効力が反映されないといった限界は

2014年以降の家畜バイオマス重量当たりの抗菌剤販売量を解析し，年次間・畜種間の比較を行うとともに，2013	東京大学大学院農学生命科学研究科農学国際専攻国際動物
資源科学研究室〒113−8657 東京都文京区弥生 1 − 1 − 1＊
連絡著者：杉浦勝明（aksugiur@mail.ecc.u-tokyo.ac.jp）
1）～2016年の EU 諸国の使用量との比較を行った．
2014～2017年の家畜バイオマス重量当たりの抗菌剤販売量を算出するにあたっては，先行研究13） と同様の方法を用いて，日本の各年の①家畜に対する抗菌剤販売量

家畜衛生学雑誌

156

第45巻第 4 号（2020）と②家畜バイオマス重量を計算し，①を②で除すること

で，2014年は2013年に比べわずかに減少したが，2015年

により算出した．日本における家畜への抗菌剤販売量つ以降2017年まで増加した．また各系統別の割合について

いては，農林水産省が公表している「各種抗生物質・合は，引き続きテトラサイクリン系が最も多く，半分近くを成抗菌性物質・駆虫剤・抗原虫剤の販売高と販売量」占めていた．テトラサイクリン系に次いで販売量が多い

15）

13）

2014年～2017年版をもとに算出した ．また，先行研究

抗菌剤は，2015年まではサルファ剤，ペニシリン系，マ同様，家畜バイオマス重量については，細井らの方法11）

クロライド系の順であったが，2016年および2017年はペと PCU（Population Correction Unit）の 2 つの方法を

ニシリン系とマクロライド系の販売量が増加したことも用いて算出し，PCU を用いた結果については EU 各国にあり，サルファ剤，ペニシリン系，マクロライド系の販

お け る 使 用 量 と の 比 較 を 試 み た． 欧 州 の デ ー タ は売量が有効成分重量べースでほぼ同じであった．全体にESVAC の2013～2016年版公開データ 4 ，5 ，6 ，7 ）を用いた．

占める割合は小さいものの，2014年以降プレウロムチリ

その結果，日本の家畜に対する2005年から2017年まで

ン系，2012年以降ポリミキシリン系が増加傾向であった．

の抗菌剤販売量の推移は有効成分の原末換算重量（有効細井らの方法および PCU の算出方法を用いて算出し成分重量）で，図 1 のとおりとなった．2014～2017年のた2005～2017年の日本の家畜バイオマス重量の変化は図

年間販売量は611トン，622トン，647トンおよび675トン

2 のとおりとなった．2014年以降も家畜バイオマス重量

800
その他

700

プレウロムチリン系
600

ポリミキシン系
キノロン系

トン

500

アミノグリコシド系
リンコマイシン系

400

マクロライド系
トリメトプリム

300

サルファ剤
200

セファロスポリン系
ペニシリン系

100

チアンフェニコール系
テトラサイクリン系
2017

2016

2015

2014

2013

2012

2011

2010

2009

2008

2007

2006

2005

0

図 1 ．2005年～2017年の日本の家畜向け抗菌剤販売重量の推移（b） Population correction unit (PCU)

4500

4500

4000

4000

3500

3500

3000

3000

2500

2500

2000

2000

1500

1500

肉用牛

1000

1000

乳用牛

500

500

0

0

豚
ブロイラー

2005
2006
2007
2008
2009
2010
2011
2012
2013
2014
2015
2016
2017

2005
2006
2007
2008
2009
2010
2011
2012
2013
2014
2015
2016
2017

(1000トン）（a） 細井らの方法※

図 2 ．日本の家畜バイオマス重量の2005年～2017年の変化．
（a）細井らの方法，（b）Population correction unit（PCU）※

細井らの方法の2005～2010年については，引用文献11から OIE の許可を得て引用した．

高木ら：日本における動物用抗菌剤販売量（続報）の合計の変化は小さかったが，畜種別割合においては，

157

2017年には約40％を占めた．

いずれの方法においても乳用牛および肉用牛の割合が減

各畜種および全畜種平均のバイオマス重量当たりの販

少 し， ブ ロ イ ラ ー お よ び 豚 の 割 合 が 増 加 し た． 特 に売量は，図 3 のとおりとなった．全畜種平均での PCU

PCU ベースでのバイオマス重量では豚の割合が増加し当たりの販売量は2014年203 mg/kg，2015年209 mg/kg，細井らの方法 ※Population correction unit (PCU)
250(mg/kg家畜バイオマス）

（d）
豚

（e）

(mg/kg PCU)

100
50

0
60

0
80

50
60

(mg/kg PCU)

40
30
20

40
20

10
0
80

0
80

60

60

40
20

40
20

0
500

0
500

400

400

300
200

300
200

100

100

0
70

140

60

120

50

100

40

80

0

30
20
10
0

60
40
20

2005
2006
2007
2008
2009
2010
2011
2012
2013
2014
2015
2016
2017

0
2005
2006
2007
2008
2009
2010
2011
2012
2013
2014
2015
2016
2017

(mg/kg家畜バイオマス）

（c）
肉
用
牛

50

150

(mg/kg PCU)

(mg/kg家畜バイオマス）

（b）
乳
用
牛

100

(mg/kg PCU)

(mg/kg家畜バイオマス）

（a）
全
家
畜

200

150

(mg/kg PCU)

(mg/kg家畜バイオマス）

200

テトラサイクリン系

チアンフェニコール系

ペニシリン系

セファロスポリン系

サルファ剤

トリメトプリム

マクロライド系

リンコマイシン系

アミノグリコシド系

キノロン系

ポリミキシン系

プレウロムチリン系

その他

図 3 ．2005年～2017年の日本の全家畜（a），乳用牛（b），肉用牛（c），豚（d），
およびブロイラー（e）の家畜バイオマス重量あたりの抗菌剤販売量の推移※

細井らの方法の2005～2010年については，引用文献11から OIE の許可を得て引用した．

家畜衛生学雑誌

158

第45巻第 4 号（2020）2016年218 mg/kg，2017年229 mg/kg で，先行研究13）で薬剤が多かった．テトラサイクリン系，サルファ剤が減の分析対象期間の最終年である2013年に比べ2017年は少傾向にあり，ペニシリン系，チアンフェニコール系が13％増加した．細井らの方法では2014年152 mg/kg，増加傾向にあった．2015～2017年はペニシリン系が最も2015年156 mg/kg，2016年162 mg/kg，2017年168 mg/kg

割合が多くなっていた．

で，2017年は2013年に比べ10％増加した（なお，2005年

豚では388～437 mg/kg で2017年は2013年に比べ14％を基準にした場合にはほとんど変化はない）．また，薬増加した．細井らの方法では389～434 mg/kg で2017年

剤耐性対策上重要な抗菌剤であるフルオロキノンおよびは2013年に比べ13％増加した．薬剤別割合については，

第 3 世代セファロスポリンの PCU 当たりの販売量は，

テトラサイクリン系が2014年以降も50％近くを占め，サそれぞれ2014年1.48 mg/kg および0.17 mg/kg，2015年

ルファ剤，マクロライド系，ペニシリン系と続いた．

2.06 mg/kg および0.19 mg/kg，2016年1.65 mg/kg およ2014年以降サルファ剤が減少傾向，マクロライド系が増び0.22 mg/kg，2017年1.89 mg/kg および0.25 mg/kg と加傾向にあり，2014～2017年はこれら 3 剤がほぼ同じ割増加傾向ではあったものの，それぞれ全体の販売量の合であった．

0.7％～1.0％および0.08％～0.11％と低い水準を維持してブロイラーでは92～105 mg/kg で2017年は2013年に比いた（図 4 ）．動物から人への薬剤耐性菌の伝播 が懸念

べ 8 ％減少した．細井らの方法では44～51 mg/kg でされている中で，これらの重要抗菌剤の使用量が低水準

2017年は2013年に比べ10％減少した．薬剤別割合では，に維持されていることは評価される．

テトラサイクリン系が減少傾向にあるものの最も多く25

畜種別に2014～2017年のバイオマス重量当たりの販売～40％を占め，その他は年により変動があるがペニシリ量をみると，乳用牛では51～62 mg/kg で2017年は2013年

ン系，アミノグリコシド系，マクロライド系，サルファに比べ20％増加した．細井らの方法では34～41 mg/kg

剤などが多かった．

で2017年は2013年に比べ21％増加した．薬剤別割合で2013年～2016年の EU 各国の PCU あたりの抗菌剤販売

は，テトラサイクリン系は2008年以降減少しており2008

量と対応する日本の抗菌剤販売量を比較すると図 5 のと年以降は約35～40％，次いでペニシリン系，サルファ剤

おりとなった．日本の PCU 当たりの販売量（204.8 ～が多かった．他の畜種ではほとんど使われていない（肉222.4 mg/kg PCU）は，EU 加盟国と比較すると上位 4用牛で平均1.1％，豚で平均0.07％）セフェム系が10％未～ 5 番目に位置していた．日本より使用量が多い国は，満（平均6.4％，2.81～8.01％）ではあるが使用されていキプロス，スペイン，イタリアなどの南欧諸国であるるという特徴があった．

が，これらの国では家畜に占める豚のバイオマス量が多

肉 用 牛 で は42 ～ 59 mg/kg で2017年 は2013年 に 比 べく，もともと使用量が高水準にある上，ESVAC が開始

31％増加した．細井らの方法では41～55 mg/kg で2017

されて以降使用量の減少がみられていないのが特徴であ

年は2013年に比べ25％増加した．薬剤別割合についてはる．一方，日本よりもともと使用量が少ない国の中には

テトラサイクリン系が約25～40％，ペニシリン系が約20

ドイツ，オランダなどさらなる使用量削減に成功してい～30％，サルファ剤が約15～25％となり，この 3 種類のる国もある．これらの国では抗菌剤使用量に関する農家

1.80
1.60
1.40
1.20
1.00
0.80
0.60
0.40
0.20

第3世代セファロスポリン

2017

2016

2015

2014

2013

2012

2011

2010

2009

2008

2007

2006

2005

0.00

フルオロキノロン

図 4 ．日本における2005～2017年の PCU あたりの第 3 世代セファロスポリン及びフルオロキノン販売量

キプロス
スペイン
イタリア
日本
ポルトガル
ハンガリー
ブルガリア
ベルギー
ポーランド
クロアチア
ドイツ
ルーマニア
フランス
エストニア
ギリシャ
チェコ
オランダ
アイルランドスロバキア
スイス
オーストリア
英国
デンマーク
リトアニア
ルクセンブルグスロベニア
ラトビア
フィンランドスウェーデン
アイスランド
ノルウェー

スペイン
キプロス
イタリア
日本
ポルトガル
ハンガリー
ベルギー
ドイツ
クロアチア
ポーランド
フランス
ブルガリア
チェコ
オランダ
エストニア
スロバキア
英国
スイス
オーストリアアイルランドデンマーク
ルクセンブルグ
ルーマニア
ラトビア
リトアニア
スロベニア
フィンランドスウェーデン
アイスランドノルウェー

mg/KgPCU

キプロス
スペイン
イタリア
ハンガリー
日本
ベルギー
ポーランド
ポルトガル
ブルガリア
クロアチア
ルーマニア
ドイツ
フランス
チェコ
エストニア
オランダ
ギリシャ
英国
スロバキア
アイルランド
オーストリア
スイス
デンマーク
ラトビア
リトアニア
ルクセンブルグスロベニア
フィンランドスウェーデン
アイスランドノルウェー

mg/KgPCU
450
400
350
300
250
200
150
100
50
0

500
450
400
350
300
250
200
150
100
50
0

mg/KgPCU

キプロス
スペイン
イタリア
ハンガリー
日本
ポルトガル
ドイツ
ベルギー
ポーランド
ブルガリア
フランス
チェコ
オランダ
スロバキア
英国
エストニア
オーストリアアイルランドルクセンブルグ
デンマーク
ラトビア
リトアニア
フィンランドスロベニア
スウェーデン
アイスランドノルウェー

mg/KgPCU

高木ら：日本における動物用抗菌剤販売量（続報）

450
400
350
300
250
200
150
100
50
0

500
450
400
350
300
250
200
150
100
50
0

2013年

2014年

2015年

2016年

図 5 ．EU 加盟国および日本における2013～2016年の PCU あたりの抗菌剤販売量

159のベンチマーキング，農家の群衛生管理の改善のためのはできないが，日本では2013年に発出された慎重使用の獣医師の役割の強化などが実施されており，これらの対
通知14） により適切な飼養衛生管理やワクチンの使用に策が効を奏している 8 ）．気候，家畜の飼養形態，細菌感より感染症の予防に努めた上で，真に必要な場合のみに染症の発生状況などの違いから EU 諸国との単純な比較
抗菌剤は使用すべきであること，特に重要な抗菌剤はや

家畜衛生学雑誌

160

第45巻第 4 号（2020）

むを得ない場合にのみ限定的に使用することが求められ

antimicrobial-agents-29-european-countries-2014_

るなど，様々な啓蒙活動が行われているにもかかわらen.pdf

ず，動物用抗菌剤の販売量が増加し続けているという今6 ）European Medicines Agency (2017) Sales of

回の分析結果を踏まえると，日本では他の予防対策（バveterinary antimicrobial agents in 30 European

イオセキュリティ，ワクチンなど）に比べ利便性の高い

countries in 2015.

抗菌剤への依存から脱却できない状況にあると考えられ

https://www.ema.europa.eu/en/documents/

る ．抗菌剤の責任ある慎重使用を推進するためには，

report/seventh-esvac-report-sales-veterinary-

通知の発出や啓蒙活動にとどまらず，農家のベンチマー

antimicrobial-agents-30-european-countries-2015_12）

キングの導入や抗菌剤使用のインセンティブを下げる経済措置などさらに実効性のある対策の実施が必要なのか

en.pdf7 ）European Medicines Agency (2018) Sales ofveterinary antimicrobial agents in 30 European

もしれない．
最後に，先行研究13）でも述べたとおり，家畜バイオ

countries in 2016.

マス当たりの販売重量という指標を用いることにより，https://www.ema.europa.eu/en/documents/

各国の家畜の飼養頭数をある程度補正した国間での比較

report/sales-veterinary-antimicrobial-agents-30-が可能となるが，畜種別の分布は補正されず，また，薬european-countries-2016-trends-2010-2016-eighth-剤の効力が反映されないなど本指標を抗菌剤使用量モニ
タリングの指標として用いることには限界があることにand EFSA Joint Scientific Opinion on measures to

留意する必要がある．

引

esvac_en.pdf
8 ）European Food Safety Agency (EFSA) (2017) EMA

用

文

献

1 ）AACTING (2018) Guidelines for Collection, Analysis
and Reporting of Farm-Level Antimicrobial Use, in
the Scope of Antimicrobial Stewardship.

reduce the need to use antimicrobial agents inanimal husbandry in the European Union, and theresulting impacts on food safety (RONAFA). EFSA
Journal 15(1): 4666
9 ）Food and Drug Administration (FDA) (2017)https://aacting.org/swfiles/files/AACTING_Guide

FDA’s Proposed Method for Adjusting Data onlines_V1.1_2018.03.23_39.pdf

Antimicrobials Sold or Distributed for Use in

2 ）Anthony F., Acar J., Franklin A., et al. (2001)

Food-Producing Animals, Using a Biomass

Antimicrobial resistance: responsible and prudent

Denominator. Federal Register, 82, 38695-38696

use of antimicrobial agents in veterinary medicine.

10）Government of Canada (2017) Canadian Integrated

Rev. Sci. Tech., 20, 829-839.
3 ）Codex Alimentarius Commission (2005) Code ofProgram for Antimicrobial Resistance Surveillance(CIPARS) Annual Report 2015.

practice to minimize and contain antimicrobial

http://publications.gc.ca/site/archivee-archived.

resistance CAC/RCP61-2005,

html?url=http://publications.gc.ca/collections/

http://www.fao.org/input/download/standards/
10213/CXP_061e.pdf
4 ）European Medicines Agency (2015) Sales ofcollection_2017/aspc-phac11）Hosoi Y, Asai T, Koike R, Tsuyuki M, Sugiura K.
(2014) Sales of veterinary antimicrobial agents forveterinary antimicrobial agents in 26 EU/EEA

therapeutic use in food-producing animal species

countries in 2013.

in Japan between 2005 and 2010. Rev Sci Tech.

https://www.ema.europa.eu/en/documents/
report/fifth-esvac-report-sales-veterinary-

33,1007-1015.
12）Isomura, R., Matsuda, M., Sugiura, K. (2017)

antimicrobial-agents-26-european-union/european-

Analyzing pig farmer’ and veterinarians’

economic-area-countries-2013_en.pdf

perceptions and intentions to reduce antimicrobial

5 ）European Medicines Agency (2016) Sales ofveterinary antimicrobial agents in 29 European

usage in Japan. J. Vet. Epidemiology. 21, 115-122.
13）松田真理・Nigel C.Kwan・川西路子・小池良治・

countries in 2014.

杉浦勝明（2017）日本における家畜バイオマス重量

https://www.ema.europa.eu/en/documents/

あたりの抗菌剤使用量の評価─細井らの方法と EU

report/sixth-esvac-report-sales-veterinary-の方法による評価結果の比較─．家畜衛生学雑誌．

高木ら：日本における動物用抗菌剤販売量（続報）42．191−197．
14）農 林 水 産 省 消 費・ 安 全 局 畜 水 産 安 全 管 理 課 長

161

要

旨

（2013）畜産物生産における動物用抗菌性物質製剤

2005～2013年の日本における家畜への抗菌剤使用量をの慎重使用に関する基本的な考え方について（平成

解析した先行研究に引き続き，本研究では2014年から25年12月24日）

2017年の使用量を解析した．その結果，2014年から201715）農林水産省動物医薬品検査所（2016−2019）動物用

年の家畜用の抗菌剤販売量は，611～675トンであった．

医薬品等販売高年報2014～2017年版

PCU 当たりの年間有効成分販売量は，全畜種平均では

http://www.maff.go.jp/nval/iyakutou/hanbaidaka/

203～229 mg/kg であり，増加していた．畜種別では豚

index.html

での使用が引き続き最も多く388～437 mg/ kgPCU であ16）World Organisation for Animal Health (OIE) (2018)

り，やはり増加していた．ブロイラーでは92～105 mg/

OIE Annural report on antimicrobial agents

kgPCU，乳用牛では51～62 mg/kgPCU，肉用牛では42intended for use in animals.

～59 mg/kgPCU であった．同じ指標を用いた EU 諸国

http://www.oie.int/fileadmin/Home/eng/Our_との比較の結果，日本は2013年以降，上位 4 ～ 5 位を占

scientific_expertise/docs/pdf/AMR/Annual_

めていることがわかった．

Report_AMR_3.pdf
17）World Health Organization (WHO) (2015) Global
action plan on antimicrobial resistance.
http://www.wpro.who.int/entity/drug_resistance/
resources/global_action_plan_eng.pdf

キ ー ワ ー ド： 動 物 用 抗 菌 剤， 家 畜 バ イ オ マ ス 重 量，
Population correction unit（PCU），モニタリング

163

第45巻
第45巻

第1−2号

総目次

2019

〈総説〉
動物由来のパスツレラ科に属する細菌の PCR による同定・検出及び血清型の同定法ならびに RTX 毒素について････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････ 伊藤博哉 ･･････････････････････････ 1〜38
〈第90回大会一般講演要旨〉
散歩中の犬間の接触率および狂犬病に対する犬飼育者の行動････････････････････････････････････････････ ナイジェル クワン・井上 舞・山田章雄・杉浦勝明 ･････････････････････････ 42〜43
携帯品で持ち込まれた非加熱肉等のウイルス汚染状況調査････････････････････････････････････････････････････････ 小林芳史・柴田明弘・稲垣麻由子・栁澤成江
尾坂優之・遠藤明仁・岩中麻里・大友浩幸 ･････････････････････････ 44〜45
養豚場72戸における2015〜2017年の抗菌剤使用量の記述的調査･･････････････････････････････････････････････････････････････････････････ 雷 志皓・山根逸郎・山崎久則
内藤 恵・呉 克昌・杉浦勝明 ･････････････････････････ 46〜47
クレブシエラ乳房炎の重篤度と分離された原因菌の好中球貪食抵抗性の関連････････････････････････････････････････････････････････ インペラトリス瑠伽・楠本周平・石村麻莉乃
澤松祐人・篠塚康典・河合一洋 ･････････････････････････ 48〜49
食性の異なる各種動物からのウェルシュ菌の分離調査･････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････ 清水かな・上塚浩司 ･････････････････････････ 50〜51
競走用馬の感染性とみられる皮膚炎からの細菌・真菌の分離同定と薬剤感受性調査（ 2 ）･････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････ 牛屋重人・上塚浩司 ･････････････････････････ 52〜53〈第90回大会教育講演要旨〉
家畜の下痢症から検出されるウイルスについて････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････ 長井

誠･･････････････････････････ 55〜56

会員へのおしらせ ･･･････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････ 57
家畜衛生学雑誌投稿規程 ････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････ 59〜60
日本家畜衛生学会会則 ･･･････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････ 61〜62

第45巻

第3号

2019

理事長就任の挨拶 ･････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････ 69〈原著〉
ITS- 1 領域を基にした PCR 法によるカラス腸内容物からの Eimeria 属原虫の検出とその分子系統解析･･･････････････････････････････････････････････････････････ 菊地大希・成廣 隆・木村和輝・上塚浩司･･････････････････････････ 71〜78〈家畜衛生フォーラム2019要旨集〉
企画説明･･･････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････ 河合一洋・林 智人････････････････････････････････ 81
牛乳房炎の診断と治療の考え方････････････････････････････････････････････････････････････････････ 河合一洋･･････････････････････････ 83〜89
Coliform 乳房炎の病態と治療戦略･･････････････････････････････････････････････････････････････････ 篠塚康典･･････････････････････････ 91〜94
マイコプラズマ・ボヴィスの病原因子とその対策････････････････････････････････････････････ 樋口豪紀･･････････････････････････ 95〜97
サイトカインを用いた牛の乳房炎防除技術の開発と展望･･･････････････････････････････････ 菊 佳男････････････････････････ 99〜102
乳房炎ワクチンとその効果･･････････････････････････････････････････････････････････････････････････ 検崎真司･･･････････････････････ 103〜108

164〈第91回大会講演要旨集〉
イノシシから世界初となるサポウイルスの検出････････････････････････････････････････････････････････ 勝田りさ子・須永藤子・大井 徹・片山幸枝
白井淳資・水谷哲也・岡智一郎・長井 誠･･･････････････････････ 112〜113
大阪のヌートリアにおけるレプトスピラ浸潤状況調査･････････････････････････････ 村田 亮・森本大貴・内田郁夫・浅川満彦・鳥居春己・高野彩子･･･････････････････････ 114〜115
牛の呼吸器由来菌における薬剤感受性の経年変化･･････････････････････････････････････････････････････････････････････････ 坂下満明・加藤晶子・廣瀬和彦･･･････････････････････ 116〜117
牛の細菌性呼吸器病に対するガミスロマイシンの臨床効果と分離菌の感受性･･･････････････････････････････････････････････････････････ 加藤敏英・石田 優・伊藤 貢・芝野健一･･･････････････････････ 118〜119
Mycoplasma bovis P81特異抗体を用いた ELISA 法の構築･････････････････････････････ 中村 光・西 航司・権平 智・藤木純平・岩野英知・樋口豪紀･･･････････････････････ 120〜121
北海道東部地域の乾乳軟膏使用状況および次期泌乳期乳房炎発生率について････････････････････････････････････････････ 北野菜奈・菊 佳男・山田倫明・樋口雅也・髙橋俊彦･･･････････････････････ 122〜123
機械搾乳時におけるライナー内逆流現象とライナー内部形状の関係･･････････････ 今尾賢人・榎谷雅文・乾 洋治・近藤仁志・楜澤共生・篠塚康典・河合一洋･･･････････････････････ 124〜125
会員へのおしらせ ･･････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････ 127〜135
2022年第68回国際食肉科学技術会議（ICoMST）神戸大会について ････････････････････････････････････････････････････････････････ 136
家畜衛生学雑誌投稿規程 ･････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････ 137〜138
日本家畜衛生学会会則 ････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････ 139〜140

第45巻

第4号

2020

〈原著〉
Clinical efficacy of injectable gamithromycin solution for bacterial bovine respiratory disease anddrug susceptibility of isolates･････････････････････････････ Toshihide Kato・Masaru Ishida・Mitsugi Ito・Ken-ichi Shibano･･･････････････････････ 147～154〈短報〉
日本における家畜バイオマス重量あたりの抗菌剤販売量（続報）･･････････････････････････････････････････････････････････････････････････ 高木弘子・雷志皓・杉浦勝明･･･････････････････････ 155～161

第45巻総目次 ････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････ 163〜166
会員へのおしらせ ･･････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････ 167〜168
第12回動物用ワクチン−バイオ医薬品研究会シンポジウムについて ･･･････････････････････････････････････････････････････････････ 169
家畜衛生学雑誌投稿規程 ･････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････ 170〜171
日本家畜衛生学会会則 ････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････ 172〜173

165

General Contents of Vol.45
Vol. 44 No. 1−2 2019
〈Review〉
Identification, detection and serotyping of Pasteurellaceae species from animals by PCR and their RTX toxins･･･････････････････････････････････････････ Hiroya Ito ･･････････････････････････････ 1〜38
〈Abstracts of oral presentations on 90th academic meeting〉･････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････ 39〜53〈Abstracts of the educational lecture on 90th academic meeting〉･････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････ 55〜56
Information for Members ･･･････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････ 57
Instruction for Authors ････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････ 59〜60
The Regulations of The Japanese Society of Animal Hygiene ･････････････････････････････････････････････････････････････････････ 61〜62

Vol. 45 No. 3 2019
〈Original report〉
Detection of Eimeria sp. from intestinal contents of wild crows by PCR based on ITS-1 region andphylogenetic analyses･･･････････････････････････････････････････ Hiroki Kikuchi et al.･････････････････ 71〜78〈Abstracts of Animal Hygiene Forum 2019〉･･･････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････ 79〜108〈Abstracts of oral presentations on 91th academic meeting〉･･････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････ 109〜125
Information for Members ･･････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････ 127〜135
Instruction for Authors ･････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････ 137〜138
The Regulations of The Japanese Society of Animal Hygiene ･･････････････････････････････････････････････････････････････････ 139〜140

Vol. 45 No. 4 2020
〈Original report〉
Clinical efficacy of injectable gamithromycin solution for bacterial bovine respiratory disease anddrug susceptibility of isolates･･･････････････････････････････････････････ Toshihide Kato et al.･････････････ 147〜154〈Note〉The updated evaluation of veterinary antimicrobial use in the food-producing animals in Japan･･･････････････････････････････････････････ Hiroko Takagi et al.･･････････････ 155〜161

166

Contents of volume 45 ･･････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････ 163〜166
Information for Members ･･････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････ 167〜168
Instruction for Authors ･････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････････ 170〜171
The Regulations of The Japanese Society of Animal Hygiene ･･････････････････････････････････････････････････････････････････ 172〜173

167

会員へのおしらせ①「日本家畜衛生学会第91回大会」開催される
2019年12月20日（金）に，「日本家畜衛生学会第91回大会」が，東京都中央区の Meiji Seika ファルマ株式会社本社
講堂において午前10時より開催されました．今回は 6 名の座長の先生方の進行のもと，家畜衛生分野に関する 7 題の研究発表が行われ活発な質疑応答がなされました．なお，当日の講演要旨については本誌45巻 3 号（2019.12発行）
をご覧ください．

②「家畜衛生フォーラム2019」開催される同日午後 1 時から，同じく Meiji Seika ファルマ株式会社本社講堂において「家畜衛生フォーラム2019」が開催されました．今回のフォーラムは「牛乳房炎の診断，治療及び予防の最前線」というテーマで，（一財）生物科学安全研究所との共催で，農林水産省からのご後援を受けて開催されました．フォーラムは，麻布大学の河合一洋先生と農研機構動物衛生研究部門の林智人先生の 2 名の座長の進行により，以下の先生方の講演が行われました．当日は約100名の参加者があり，今後の研究展開に向けた活発な質疑応答がなされました．なお，家畜衛生フォーラム2019講
演要旨については本誌45巻 3 号（2019.12発行）をご覧ください．
1 ．乳房炎の診断と治療の考え方
河合 一洋（麻布大）
2 ．Coliform 乳房炎の病態と治療戦略
篠塚 康典（麻布大）
3 ．マイコプラズマ・ボビスの病原因子とその対策
樋口 豪紀（酪農大）4 ．サイトカインを用いた牛の乳房炎防除技術の開発と展望
菊 佳男（農研機構動衛研）
5 ．乳房炎ワクチンとその効果
剣崎 真司（かごしま中部 NOSAI）③日 本家畜衛生学会第92回大会及び通常総会は 7 月 4 日（土）麻布大学にて開催予定

168

【お詫び】
3 号の総会資料の理事名簿（134ページ）に誤りがございましたので，再度ここに訂正してお知らせいたします．

役員（理事長，副理事長，常務理事，監事，理事）の任期は 2 年間で，この体制は2019～2021年である．太字が変更もしくは新規の理事の方々である．

名誉会員・理事名簿（2019～2021）
名誉会員
飯塚

三喜

前東京農工大学

倉田一明

前日本生物科学研究所

柿市

徳英

前日本獣医生命科学大学

山城

富男

前科学飼料研究所

磯動物病院

△高橋

欣也

（一財）日本生物科学研究所

理事・監事
△磯

日出夫

△伊藤

博哉

農研機構動物衛生部門

△高橋

俊彦

酪農学園大学

岩田

祐之

山口大学

＊竹中

昭雄

（一社）日本科学飼料協会

△上塚

浩司

茨城大学

△田中

良和

日本獣医生命科学大学

植村興

前四条畷学園大学

△長井

誠

麻布大学

△大友

浩幸

農林水産省動物検疫所

永幡肇

岡山理科大学

＊押田

敏雄

前麻布大学

△並松

孝憲

全農家畜衛生研究所

小尾

岳史

鹿児島大学

△野上

貞雄

前日本大学

◎河合

一洋

麻布大学

△羽賀

清典

（一財）畜産環境整備機構

△齋藤

康倫

日本全薬工業（株）△英

俊征

神奈川県湘南家畜保健衛生所

△坂田

亮一

明治大学

○樋口

豪紀

酪農学園大学

迫田

義博

北海道大学

△平山

紀夫

日本獣医生命科学大学

佐藤

繁

岩手大学

△廣瀬

和彦

Meiji Seika ファルマ（株）

塩野浩紀

農研機構動物衛生部門

福士

秀人

岐阜大学

●篠塚

康典

麻布大学

△福田

昌治

埼玉県農業技術研究センター

△嶋﨑

智章

農林水産省動物医薬品検査所△藤井武

ゾエティス・ジャパン（株）

△下平

浩己

農林水産省動物衛生課

△牧江

弘孝

（公社）日本動物用医薬品協会

△白井

淳資

東京農工大学△宮﨑茂（一財）生物科学安全研究所

末吉

益雄

宮崎大学

△村上

裕信

△杉浦

勝明

東京大学

△守野

繁

△須藤

慶子

群馬県中部農業事務所家畜保健衛生課

△山本

孝史

△髙井

伸二

北里大学

麻布大学
農林水産省動物検疫所
前東京農業大学〔五十音順〕〈変更個所は太字表示〉◎：理事長○：副理事長●事務局長△：常務理事＊：監事〔2019年 7 月現在〕

169

シンポジウム開催のお知らせ
動物用ワクチン−バイオ医薬品研究会は下記のようにシンポジウムを開催致しますので，奮ってご参加ください．

第12回動物用ワクチン−バイオ医薬品研究会シンポジウム「動物用バイオ医薬品の最先端：動物用抗体医薬の現状と未来」
日時：2020年 5 月21日（木） 13時00分～17時00分

場所：エッサム神田ホール 2 号館

2 −501

東京都千代田区内神田 3 −24− 5JR，東京メトロ銀座線
東京メトロ丸の内線
参

加費：会員無料（非会員の方

神田駅から徒歩 2 分

淡路町駅，都営新宿線

ウェブページ：http://www.jsavbr.jp/topics.php?id=44

お問い合わせ

：研究会事務局（jimukyoku@jsavbr.jp）

プログラム

：

13：10～14：10

教育講演

小川町駅から徒歩 5 分

一般2,000円，学生1,000円）「ヒト抗体医薬の現状と未来」

東北大学大学院医学研究科・抗体創薬分野・教授
加藤
14：10～15：10

幸成

基調講演

「成長続く動物用医薬品市場」

東レ経営研究所・チーフアナリスト
永井知美

15：25～15：55 話題提供 1 「新しい犬アトピー性皮膚炎の治療薬：イヌ化抗イヌインターロイキン−31モノク

ローナル抗体薬「サイトポイント ®」ゾエティス・ジャパン（株）・コンパニオンアニマルビジネス統括部・テクニカルサービス部
橋口
15：55～16：25

順子

話題提供 2 「犬の腫瘍疾患に対する免疫チェックポイント阻害抗体薬の臨床研究」
北海道大学大学院獣医学研究院・先端創薬分野・特任助教
前川

16：25～16：55

直也

話題提供 3 「牛の慢性感染症に対する免疫チェックポイント阻害抗体薬の臨床研究」
北海道大学大学院獣医学研究院・先端創薬分野・特任助教
岡川

朋弘

170

「家畜衛生学雑誌」投稿規程
1 ．本誌には原則として，家畜衛生に関する原著論文，
短報，総説（刷り上がり 4 頁以下のミニレビューを

Key words（キーワード）をつける．
6 ）英語論文および和文論文の英文 Summary は，含む），技術資料を掲載する．なお，原稿は編集委

投稿前にしかるべき校閲を受けること．

員会事務局へ電子メール添付（PDF ファイル）で7 ）原著論文で刷り上り 8 頁（30文字×25行＝750

提出する．印刷原稿 3 部（うち 2 部は鮮明なコピー

文字で，図表を含めて16枚程度）までは，印刷でもよい）の書留郵便あるいはレターパックによる費を本学会で負担する．ただし，超過ページに提出も可とする．

ついては，その費用を著者の負担とする．な

2 ．投稿にあたり，論文掲載までの対応を行う連絡著者

お，総説についてはこの限りではない．また，（コレスポンディングオーサー）は，投稿原稿が他

カラーや特殊な用紙での印刷は，その費用を著

誌にすでに掲載あるいは投稿中ではないこと，著者全員が投稿論文の内容及び掲載に同意していることを記載した文書（カバーレター）を提出すること．
3 ．筆頭著者あるいは連絡著者は本学会会員であることが望ましいが，投稿の要件とはしない．
4 ．掲載論文は原著論文，短報，総説（刷り上がり 4 頁

者の負担とする．
8 ）使用する動植物・微生物などの学名はイタリッ
ク体で表記する．
9 ）度量衡の単位，略記は SI 単位系を基本とし，以下の例に従う．
［例］m，cm，mm，µm，nm，kg，g，mg，µg，ng，

以下のミニレビューを含む），技術資料とする．

L，mL，µL，nL，M，mM，µM，％，cm2，
m3，


5 ．全ての投稿論文は編集委員及び複数の審査員が審査

hr，min，sec，℃，pH，Pa（血圧は mmHg，
し，編集委員長が掲載の採否を決定する．
6 ．投稿論文は和文または英文とし，次の指示（記述順

生体内圧力は Torr）など．
10）表および図（写真を含む）は用紙 1 枚に 1 つと序など）に従うこと．

し，個々に番号と表題を記入し，投稿原稿の最1 ）論文原稿は別に定める注意に従って作成するこ

後に添付する．

と．用紙サイズは A4とし，和文の場合は30字

11）引用文献は下記の例にならって，アルファベッ

で25行程度，英文の場合はダブルスペース（70ト順にならべ，本文中では 1 ）， 3 − 6 ）のよ

字で25行程度）とする．原稿本文の左側に行番

うに上付き（superscript）で記入する．ただ号を表記すること．

し，著者名は 3 名までとし， 4 人目以降は省略

2 ）和文の場合も句読点は，
「，
」
，
「．
」を用いること．

し，「ら」，「et al」で示す．

3 ）論文原稿は第 1 ページに表題，著者名，所属機［例］

関名およびその所在地を和文と英文で記載する

雑誌とともに，連絡著者とその電子メールアドレスを記載する．また，和文の場合は20字，英文の場合は40字以内の略表題（running head）を記載する．
4 ）原著論文の構成は原則として，Summary（本文が和文の場合も英語），序文（Introduction），
材料および方法（Materials and Methods），結果（Results）， 考 察（Discussion），引用文献（References），要旨（本文が和文であっても英文であっても，和文の要旨）とする．ただし，謝辞は，別項目を設けず，本文の最後に 1 行の空白をとった後に記載する．
5 ）英文 Summary は250語以内，和文要旨は600字以内とし，それぞれの最後の行に 5 つ以内の1 ）内田孝治・藤井武・高山公一ら（1991）ブロ
イラーにおける実験的大腸菌症に対するラノ
フロキサシンの治療効果および用量設定試
験．家畜衛生研究会報．33，19−24．
2 ）Oshida, T., Fukuyasu, T., Kohzaki, K., et al.
(1993) A new treatment system for animal
waste water using microorganism, soil andvagetation. Asian-Australasian Journal ofAnimal Sciences. 6, 205-209.
電子ジャーナル3 ）Wilson, D.J., Rood, K.A., Bunnel, J., et al. (2014)
Johne’s disease, mycoplasma and BVD in
Utah-Bulk tank milk testing and comparison

171する，その他の規定については原著の場合に準じ

		 t o p r e v i o u s r e g i o n a l p r e v a l e n c e a n d
individual herd results over time. Journal of
Veterinary Science and Technology. 5:182.

る．
8 ．総説及び技術資料の構成については特に規定を設けないが，引用論文の記載法は原著論文の場合に準じ

doi: 10.4172/2157-7579.1000182.
単行書

ることとする．
9 ．別刷り費用は著者の負担とするが，筆頭著者あるいは連絡著者が本学会会員の場合は，50部に限り無料4 ）伊予部志津子（1980）薬剤耐性因子（R）のとする．

検出法，薬剤感受性測定法．22−48頁．三橋

10．本誌の発行は原則として，年 4 回（ 4 月， 7 月，10

進編，講談社，東京．

月および 1 月）とする．

5 ）McDonrd, P. (1976) Trends in silage making,Microbiology in Agriculture, Fisheries and11．編集委員会事務局を下記に置く．
〒252−5201

Food. pp109-121. Shinner, F.A and Carr, J.G.

神奈川県相模原市中央区淵野辺 1 −17−71

eds. Acad. Press, London, NY.

麻布大学獣医学部伝染病学研究室内
12）図はグラフィックソフトウェアで作成すること

日本家畜衛生学会編集委員会

が望ましい．手書きで作成する場合は，そのまTel	  042（769）1643

ま製版できるよう，白色紙または青色方眼紙にE-mail：jjah@azabu-u.ac.jp

タイプやレタリングなどにより作成する．

12．本誌に掲載された論文の著作権は，日本家畜衛生学

13）投稿原稿が受理（掲載決定）されたならば，著会に帰属する．

者 は す み や か に 最 終 原 稿 の Microsoft Word
ファイルを電子メールで提出すること．図につ附則

いては，グラフィックソフトウェアで作成した

本規程は，2015年 1 月 1 日以降の投稿論文に適用する．

ファイルも併せて提出する．

本規程は，2015年 7 月12日以降の投稿論文に適用する．

7 ．短報は，その内容を成績および考察（Results and本規程は，2016年11月 5 日以降の投稿論文に適用する．

Discussion） と し て ま と め， 要 旨（Summary） は

本規程は，2019年 7 月20日以降の投稿論文に適用する．

英文では200字以内の和文，和文では100語以内の英文をつける．原稿の長さは刷り上りで， 2 頁以内と論文原稿を作成する上での注意
1 ）執筆にあたり，投稿規定をもう一度，熟読すること．

5 ）写真は印刷に耐えうる鮮明なものを使用すること．

2 ）各行の行末での強制改行をしないこと．

6 ）図は，Microsoft PowerPoint，Excel，Adobe Photoshop，
3 ）投稿論文が和文，英文のいずれの場合も数字，欧文Illustrator 等のソフトウェアで作成するのが望ましい．

は全て 1 バイト文字（いわゆる半角）で入力するこ

7 ）論文受理後の最終原稿は，Microsoft Word（あるいと．ただし和文ではかっこ（ ）は 2 バイト文字

は Microsoft Word 互換ソフトウェア）ファイルと（いわゆる全角）とする．
「µ」（マイクロ）は半角して提出する．ただし，Microsoft Word 互換ソフ

立体で入力すること．

トウェアを使用した場合は，Microsoft Word で正4 ）投稿論文原稿は PDF ファイルとして事務局まで電しく表示されることを確認すること．グラフィック

子メールで提出すること．その際には必ずパスワー

ソフトウェアで作成した図データは，jpeg，tiff 等

ドロックし，パスワードは別メールで事務局まで連の汎用フォーマットで提出する．

絡すること．特段の理由がある場合は，印刷原稿 3部（うち 2 部は鮮明なコピーでも可）を事務局まで
書留郵便あるいはレターパックで送付すること．

日本家畜衛生学会
編集委員会

172

日本家畜衛生学会会則

第一章（総
第1条

則）

本学会は，日本家畜衛生学会（英文表記：The

当する事務局担当者を委嘱する．
会員の退会・除名
第 9 条 退会を希望する会員は，理事長に退会する旨を届出ること．

Japanese Society of Animal Hygiene）（以下，「学会」とする．
）と称する．
第2条
第3条

あった場合，または会費を 5 年分以上滞納した機関におく．

場合は除名とする．

学会は，家畜衛生とその関連領域における学究の向上を図り，畜産の進歩発展に寄与すること

第4条

第10条 学会の名誉を傷つけたり，目的に反する行為が

学会の事務局は，原則として理事長の所属する
を目的とする．

第三章（役員，役員会および委員会）

学会は，前条の目的を達成するために，次の事

役員および役員会

業を行う．

第11条

⑴

研究発表会及び学術講演会等の開催⑵

学会誌「家畜衛生学雑誌」の発行⑶

学会の発展に貢献した者への表彰⑷

その他学会の目的達成のために必要な事業

理事は理事長が委嘱し，総会の承認を受ける．
2

理事は理事会を組織し，理事長を補佐し，学会の運営に関して第 4 条の事項を行う．

第12条

1

理 事長は，常務理事の互選により選出する．

第二章（会員および会費）2理事長は，学会を代表し , 会務を総理する．

3

理事長は，常務理事の中から庶務・会計を学会の構成員

担当する事務局担当者（事務局長）を委嘱

第5条

する．

学会の会員は正会員，学生会員，賛助会員および名誉会員より構成する．
⑴
⑵

⑶

⑷

第13条 常務理事会および理事会は理事長が随時招集する．

正会員：学会の趣旨に賛同し，会費を納入
した個人

委員会

学生会員：学会の趣旨に賛同し，会費を納

第14条の編集委員会，学術企画委員会およびホー

単年度とする．

ムページ管理委員会を設置する．
2

賛助会員：学会の趣旨に賛同し，その事業理事の中から指名する．但し，常務理事会

人又は団体が必要と認めた場合には会貝の中から指名

名誉会員：学会に永年功労があり，総会にすることができる．
3

委 員会の委員長は , 委員の互選により選出
し，理事長が指名する．

会 費は正会員にあっては年額5,000円，学生会
は 1 口年額10,000円とし，毎年 7 月末までに納第四章 （総入するものとする．

第15条

会員資格

会）

通常総会は毎年 1 回，理事長が招集する．

第16条 理事長が必要と認めた場合は，臨時総会を招集
学会の会員になろうとする者は，所定の手続を行い，定められた会費を納入すること．

会員の義務
第8条

委員会の委員は，原則として理事長が常務を援助するため，所定の会費を納入した個員にあっては年額2,000円，賛助会員にあって第7条

理事長は第 4 条の事業を達成するため常設入した学生，大学院生．ただし会員期間はおいて承認された個人
第6条

1

1
2

することができる．
第17条

総会では次の事項を議決する．
⑴

事業計画および事業報告に関する事項

会員は本学会の会則に従い，本学会の運営⑵

予算および決算に関する事項に協力し，会費を納入する義務を負う．

⑶

会則の改正に関する事項

理事長は常務理事の中から庶務・会計を担⑷ その他，学会の目的を達成するために必要

173日に施行する．

な事項

第五章（会
第18条

計）

学会の経費は会費その他の収入をもって，これ⑷日に施行する．
⑸会計年度は 4 月 1 日より，翌年 3 月31日までと⑹⑺

則この会則は平成21年 7 月 4 日に改正し，同日に施行する．

する．

附この会則は平成17年 7 月 2 日に改正し，同日に施行する．

にあてる．
第19条

この会則は平成16年 7 月 3 日に改正し，同この会則は平成23年 7 月 2 日に改正し，同日に施行する．

⑴⑵

こ の会則は平成14年 7 月 6 日より施行すこの会則は平成27年 7 月11日に改正し，同る．

日に施行する．ただし，平成27年度の会費

学会設立時の役員は家畜衛生研究会（以下は4,000円 と し， 平 成28年 度 か ら 会 費 を「研究会」と略す）の役員が，暫定的に就5,000円とする．

任することとし，理事長は研究会の会長が，常務理事は研究会の幹事が，理事は研究会の評議員が，監事は研究会の監事がそれぞれ就任する．
⑶⑻

この会則は平成15年 7 月 5 日に改正し，同⑼

この会則は平成28年 7 月 9 日に改正し，同日に施行する．

⑽ この会則は令和元年 7 月20日に改正し，同日に施行する．

174

協賛企業一覧
日本家畜衛生学会は以下の企業からの協賛を受けております．ここに記して謝意を表します（五十音順）．
1 ．MSD アニマルヘルス（株）

8 ．日生研（株）

2 ．エランコジャパン（株）

9 ．日本ハム（株）

3．
（株）科学飼料研究所

10．日本全薬工業（株）

4 ．共立製薬（株）

11．バイエル薬品（株）

5 ．住化エンバイロメンタルサイエンス（株）

12．Meiji Seika ファルマ（株）

6 ．ゾエティス・ジャパン（株）

13．（株）メディプラス製薬

7 ．田村製薬（株）〔2020年 2 月現在〕

日本家畜衛生学会入会のすすめ
日本家畜衛生学会は家畜衛生とその関連領域における学術の交流を図り、畜産の進歩発展に寄与することを目的とした学会です。
＜主な活動＞
・ 年２回（７月、12 月）の研究発表会
・ 年１回のフォーラム（12 月ごろ）の開催
これまでの主なテーマ「狂犬病」、「口蹄疫」、「鳥インフルエンザ」、「BSE」、「家畜ふん尿」など
・ 年４冊の機関誌「家畜衛生学雑誌」の発行
・ 学会賞の授与
年会費5,000円（但し、学生は2,000円）
御請求戴ければ、見本誌を贈呈します!!

家畜衛生学雑誌

The Japanese Society of Animal Hygiene
日 本 家 畜 衛 生 学 会〒252-5201 神奈川県相模原市中央区淵野辺1-17-71
麻布大学獣医学部獣医学科衛生学第一研究室内TEL ／ FAX：042−850−2508

http://www.kachiku-eisei.jp/
e-mail：k-eisei@azabu-u.ac.jp
Hpで活動内容がご覧になれます!!（日本家畜衛生で検索）

第45巻第 4 号

令和 2 年 3 月 1 日発行（会員配布）
発

行

印 刷 所

日本家畜衛生学会
理事長 河合一洋〒252−5201 神奈川県相模原市中央区淵野辺 1 −17−71
麻布大学獣医学部獣医学科衛生学第一研究室内☎／ FAX：042−850−2508
ホームページ：http://www.kachiku-eisei.jp/
e-mail：k-eisei@azabu-u.ac.jp
振替口座：00240－ 3 －43171
明誠企画株式会社〒208－0022 東京都武蔵村山市榎 2 － 25 － 5☎ 042−567−6233 FAX 042−567−6230

令和
日本家畜衛生学会

年

月

日

御中

入 会 申 込 書
貴会への入会を下記の通り申込ます．

記
フリガナ
氏

名：

所属名称：
部

署：

役

職

所属住所：〒TEL：

FAX：

e-mail：

自宅住所：〒

TEL：
e-mail：会員の種類 ： ○正 会 員 ・ ○学生会員 ・ ○名誉会員
会報送付先 ： ○自宅 ・ ○勤 務 先○内にチェックを付して下さい．

１．入会申込書は必要事項をすべて正確に記入し，郵便またはFAX（042−850−2508）にてご送付下さい．
２．年会費は個人会員 5,000円，賛助会員 10,000円／口（１口以上）を郵便振替口座（加入者名：日本家畜衛生学会，No. 00240−3−43171）へお振込下さい．
３．申込先は〠252−5201

神奈川県相模原市中央区淵野辺１−17−71
麻布大学獣医学部獣医学科衛生学第一研究室内
日本家畜衛生学会事務局宛

TEL／FAX：042−850−2508

４．ホームページからも申し込めます：http://www.kachiku-eisei.jp/

令和
日本家畜衛生学会

年

月

御中

変
変更手続きを下記の通り致します．

更

届

記

フリガナ
○

氏

名：

○

所属名称：

○

部

○

所属住所：〒

署：

○

役

TEL：

○

自宅住所：〒

○

TEL：

職

FAX：

e-mail：e-mail：○会員の種類：○正会員 ・ ○学生会員 ・ ○名誉会員○会報送付先：○自宅 ・ ○勤務先全てご記入の上，上記変更部位の○内にチェックを付して下さい．

１．変更届出書は必要事項を正確に記入し，郵便またはFAX（042−850−2508）にてご送付下さい．
２．届け先は〠252−5201

神奈川県相模原市中央区淵野辺１−17−71
麻布大学獣医学部獣医学科衛生学第一研究室内
日本家畜衛生学会事務局宛

TEL／FAX：042−850−2508

３．ホームページからも手続きできます：http://www.kachiku-eisei.jp/

日4

乳剤