ウマロタウイルス病
Equine Rotavirus Infection（第 2 版）

公益社団法人 中央畜産会

目次

発刊にあたって1

ウマロタウイルス病の要約

2

ウマロタウイルスについて

3

1. 病原体の形態と分類

3

2. 疫学

5

3. 発症病理64. 臨床症状

7

5. 治療

7

6. 診断法

8

①臨床診断

8

②病原学的診断8１）ウイルス分離２）電子顕微鏡による観察
３）RT-PCR法４）RT-LAMP法
５）簡易診断キット③血清学的診断
7. 予防

10
11

①ワクチン

11

②防疫対策

13

参考文献

14

おわりに

16

発刊にあたって
ウマロタウイルス病は、子馬に急性下痢症を引き起こすウイ
ルス性感染症です。生産地では毎年春から夏にかけて、毎年この病気が流行します。近年の調査では、流行時期において子馬の下痢症の半数以上からウマロタウイルスが検出されています。2001年にワクチンが開発され、ワクチン接種により臨床症状は軽減しましたが、発生を抑えられるまでには至っていな
いのが現状です。
本パンフレットは2000年の第１版をもとに、新知見および実用的な内容を加え、全面的に内容を改訂したものです。本パンフレットがウマロタウイルスの理解と防疫の一助となれば幸いです。

平成26年8月
公益社団法人1

中央畜産会

ウマロタウイルス病の要約
ウマロタウイルス病は、A群ロタウイルスに分トによって実施されている。この簡易診断キットの類されるウマロタウイルスによって起こる消化器

特徴は、専用の試薬や装置が必要なく、15分程度疾患であり、生後4 ヶ月齢以下の子馬が発症する。

で結果を得られるという点である。検査結果陽性

ウマロタウイルスに対して感受性の高い子馬が多の場合は、隔離や消毒といった防疫対策を迅速にくなる5月から8月にかけて感染馬が激増する。感実施することが重要である。ロタウイルスに対し染様式は糞口感染であり、1頭が感染し発症すると、ては、牧場で汎用されている逆性せっけん系消毒

多量のウイルスを含んだ下痢便を排出する。その薬は消毒効果が低い。次亜塩素酸ナトリウム、ヨーため適切な防疫対策を講じない場合、牧場内に次々ドホール、エタノール、グルタラール等が消毒薬と伝播する。

として有効である。

ロタウイルスは、外殻にある糖タンパク質VP7

ウマロタウイルス病の治療として、脱水補正のおよびスパイクタンパク質VP4の性状によって分ための輸液が最も重要である。他に、ウマロタウ類される。VP7によって分類される型をG型、VP4

イルス感染と上部消化器潰瘍との関連が示唆されによって分類される型をP型という。この分類にており、予防的に抗胃潰瘍薬を投与することが多従うと、日本においては1990年代前半までは、いい。

くつかの例外はあったものの、G3P[12]のウイル予防用として、2001年からG3P[12]のウイルス

スのみが流行していた。しかし、1990年代後半か

株を含んだ不活化ワクチンが市販されている。本ら、G3P[12]のウイルスに加えてG14P[12]のウイル

ワクチンは、妊娠馬に対して分娩の1 ～ 2 ヵ月前

スが流行していることが明らかとなった。その後、までに4週間隔で2回筋肉内に接種する。妊娠馬は2003年から2008年における調査によっても、引きワクチン接種を受けることにより、ウマロタウイ

続きG3P[12]およびG14P[12]のウイルスがともに流

ルスに対する抗体を豊富に含んだ初乳を泌乳する。

行していた。日本以外においても、G3P[12]および

子馬はその初乳を飲むことにより抗体を付与され、G14P[12]のウイルスが流行していると報告されてウマロタウイルスに起因する下痢症の予防およびおり、世界中の馬群でこの二つの型のウイルスが症状の緩和を図る。現在G3P[12]およびG14P[12]流行していると考えられている。

の二つのウイルスが流行しているが、日本を含め

ウマロタウイルス病の診断は下痢便中のウイル

両方の型のウイルスをワクチン株として採用してスの検出によって行われる。現在臨床現場での診いる国はない。G14P[12]のウイルスを加えたワク

断は、イムノクロマト法を原理とした簡易診断キッチンの効果については、今後の検討課題である。

2

ウマロタウイルスについて
１

病原体の形態と分類

ウマロタウイルスはレオウイルス科ロタウイル

蛋白質をコードしている。ウイルス粒子は直径約ス属に分類される二本鎖RNAウイルスであり、エ75nmの正20面体構造をとり、コア、内殻およびンベロープはない（図1）。エンベロープがない

外殻の3層から構成される。コアはVP1、VP2おため環境中で長期間安定して存在可能であり、かよびVP3、内殻はVP6、そして外殻はVP7およびつエンベロープのあるウイルスと比較して消毒薬

VP4で構成されている（図2）。内殻蛋白質であるに抵抗性を示す。ウイルスゲノムは11本の分節

VP6の抗原性および遺伝的相違からA群からG群

RNAで構成され、構造蛋白質であるVP1-4、VP6の7群に大別されるが、現時点までに報告されてとVP7、および非構造蛋白質であるNSP1-NSP6

いるウマロタウイルスは全てA群に属する。また、をコードしている。NSP5/NSP6をコードしてい

外殻に存在する糖タンパク質VP7およびスパイク

る第11分節以外は、1分節につき1つのウイルス

タンパク質VP4は、それぞれ中和抗体を誘導する。

図 1.

ウマロタウイルス粒子

3

図 2.

ロタウイルス粒子の模式図小林宣道 , 浦澤正三 . 2000. ロタウイルス . ウイルス . 50: 157-172 より引用し、一部改編した。

なった。

VP4は腸管内のトリプシンによってVP8*およびVP5*に開裂することにより、感染性を獲得する。

また、2011年にロタウイルスの専門家らで組この性質のため、ウイルス分離を実施する際に織された国際機関であるRotavirus Classification

は、培養液へのトリプシン添加が必要となる。こWorking Groupがロタウイルス株の命名の指針をれまでA群ロタウイルスの分類は外殻蛋白質VP7提唱した。新しい命名法では、群名/由来/同定さおよびVP4に対する抗血清を用いた交差中和試れた国/一般名/同定された年/GおよびP型、の順

験によって実施され、それぞれG（Glycosylated）

で表記される。由来には、臨床検体から直接塩基

およびP（Protease sensitive）血清型が決定され配列を解読した株の場合wt（wild-type）が、培てきた。しかし、抗血清の作製等、血清型別の操養細胞で分離された株の場合tc（tissue-culture-

作が煩雑であること、および分子生物学的手法のadapted）が付け加えられる。本パンフレットで発展により、VP7およびVP4遺伝子配列に基づいはこの指針に従って各ロタウイルス名を記載す

たGおよびP遺伝子型を用いて分類されるように

る。

4

２

疫学
G型（G3、G5、G8、G10、G13、G14） お よ び①ウイルスの生態

6つの P 型（P[1]、P[3]、P[7]、P[11]、P[12]、ウマロタウイルスは、多くの国の子馬の下痢便

P[18]） が 報 告 さ れ て い る。 組 合 せ と し て、から検出されており、世界中に蔓延している。血

G3P[12]、G3P[3]、G5P[7]、G8P[1]、G10P[11]、

清疫学調査では、ほとんどの成馬がロタウイルス

G13P[18]、およびG14P[12]が報告されている。

に対する抗体を保有しており、至るところに存在

その組合せの中、現在はG3P[12]およびG14P[12]していると考えられている。ウマロタウイルスのウイルスが世界中の馬群で流行している。

感染による子馬の下痢症は5月から8月にかけて

日本において1990年代前半までは、いくつか激増する。これは2月から6月にかけて子馬が産の例外はあったものの、G3P[12]のウイルスのまれるため、5月から8月にかけてウマロタウイ

みが流行していた。しかし、1990年代後半の疫ルスに対して感受性の高い子馬の数が多くなるた

学 調 査 か ら、G3P[12]に 加 え てG14P[12]が 流 行めである。1頭がウイルスに感染すると、下痢便

していることが明らかとなった。その後、2003

中には多量のウイルスが含まれるため、牧場内に年から2008年における調査によって、引き続き次々と伝播する。また、秋以降翌年までウマロタ

G3P[12]およびG14P[12]がともに流行しているウイルスによる下痢症は認められなくなるが、どことが明らかとなった（表1）。さらにこの調査のように冬を越しているのであろうか。感受性がにおいて、子馬の下痢便の半数以上からウマロタなくなった当歳馬や成馬が不顕性感染している、

ウイルス遺伝子が検出されていることから、ウマまたはロタウイルスは環境中で安定であるため、ロタウイルスが子馬の下痢症の主要因であること

環境中で生き延びている等と推察されるが、詳細が再確認された。日本以外においても、G3P[12]は不明である。

およびG14P[12]が流行していると報告されており、世界中の馬群でこの二つの型のウイルスが流②GおよびP型別による疫学調査

行していると考えられている。

ウマロタウイルスとして、これまでに6つの表１. 2003 〜 2008 年に採材された下痢便におけるウマロタウイルス陽性検体数
表1. 2003～2008年に採材された下痢便におけるウマロタウイルス陽性検体数

各G遺伝子型陽性数

年

検体数

陽性数

G3 (%)

G14 (%)

G3, G14両陽性 (%)

2003

426

210

65 (30.9)140 (66.7)

5 (2.4)

2004

476

219

152 (69.4)

47 (21.5)

20 (9.1)

2005

362

231

81 (35.1)

111 (48.0)

39 (16.9)

2006

318

184

94 (51.1)

56 (30.4)

34 (18.5)

2007

260

157

54 (34.4)

60 (38.2)

43 (27.4)

2008

176

148

16 (10.8)

88 (59.5)

44 (29.7)

合計

2018

1149

462 (40.2)

502 (43.7)

185 (16.1)

なお、この表はNemoto, M. et al. 2011. Vet. Microbiol. 152: 67-73.より引用し、一部改編したも
のである。
5

３

発症病理

ウマロタウイルスは糞口感染によって伝播すキシン）として機能すること、およびロタウイル

る。感染実験の結果より、ウマロタウイルスは主ス感染によって腸管神経系が刺激されることで下に小腸の絨毛上皮細胞に感染し、感染した細胞を痢を誘発するといわれている。ウイルス感染後、破壊することにより（図3）、吸収不良を引き起

数日で下痢を発症し、10日程度下痢が続くことこす。また他動物種では、ロタウイルスの非構造がある。下痢が治まった後も、3日程度はウイル

タンパク質であるNSP4が腸管毒素（エンテロト

スを排出する。

図 3.

ウマロタウイルス感染子馬の十二指腸の HE 染色像
絨毛中位から遠位端の上皮細胞が脱落している。

6

４

臨床症状

ウマロタウイルス病は、特に1 ～ 3 ヶ月齢の子馬に多発する。アメリカでは、
平均75日齢（2 ～ 155日齢の範囲）の子馬がウマロタウイルス病を発症していたとの報告がある。特徴的な症状は、水様性下痢（図4）、哺乳停止、疝痛、元気消失である。しかし、ウマロタウ
イルス感染により、下痢ではなく、便秘になる場合もある。発熱は必ずしも起こらない。非常に伝播力が強いウイルスであり、急速に感染が広がり、一度アウトブレイクすると、ほとんどの馬が感染する。一般的に致死率は低く、予後は良好である。しかし、生後2週間未満の子馬の場合、ウマロタウイルス
感染がきっかけとなった脱水や代謝異
常による致死率が比較的高いため、注意が必要である。また、ウマロタウイ
ルス感染と上部消化器潰瘍との関連が示唆されている。
図 4.

５

ウマロタウイルス感染子馬の下痢（JRA 日高育成牧場提供）

治療

脱水補正のための輸液が最も重要である。疝痛

クラルファートを投与することもあるが、他の経口症状の緩和には非ステロイド系抗炎症剤の投与が薬と同時に投与すると吸収を阻害する可能性があ

有効であるが、過剰投与によって胃潰瘍のリスクがるため、注意が必要である。また、通常の症状の増大するため、注意が必要である。ウマロタウイ

場合必要ないが、2次感染や敗血症が疑われる場合

ルス感染と胃潰瘍との関連が示唆されているため、は、抗生物質の投与が必要である。他に、正常細予防的に抗胃潰瘍薬（プロトンポンプ阻害薬のオ菌叢を形成するためのプロバイオティクスやプレ

メプラゾールやH2受容体拮抗薬のファモチジンなバイオティクスの投与、下痢便による肛門周囲のど）を投与することが多い。胃粘膜保護薬としてス皮膚炎予防のための洗浄および軟膏の塗布を行う。

7

６

診断法
の型別を行うことが可能である。これはPCRを①臨床診断

2回行う方法で、1st RT-PCR産物を用いて、2nd

上述したとおり、生後4か月齢以下の子馬が水PCRを行う。1st RT-PCRにおいてG3またはG14型様性の下痢、哺乳停止、疝痛、元気消失等の症状に関係なくVP7遺伝子を増幅し、2nd PCRでG3とを示し、牧場内で連続して数頭の子馬が同様の症

G14型の区別を行う。以前は血清学的にG型別を状を示すことが本病の特徴である。しかし、下痢行っており煩雑であったが、本法の開発および応を引き起こす原因は他にも多くあるため、以下の用により、飛躍的にウイルスの型別が容易になっ診断法で診断することが必要である

た。さらにウイルス遺伝子の塩基配列を解読し、系統樹解析を行うことで、より詳細に疫学調査を②病原学的診断

実施することができる。後述する簡易診断キット
より検出感度が高い。

１）ウイルス分離
他のウイルス感染症同様、ウイルス分離は診断のゴールデンスタンダードである。ロタウイル
スの分離には、アカゲザル胎児腎細胞由来のMA-

４）RT-LAMP（reverse transcription loopmediated isothermal amplification）法（図6）

104細胞やヒト大腸がん細胞由来のCaco-2細胞がRT-LAMP法は、近年様々な感染症に応用され用いられる。培養液中へトリプシンを添加し、5ている遺伝子診断法である。本法は等温（60 ～～ 7日間回転培養を行うことにより、ウイルス分65℃）で増幅反応が起こることから、ウォーター離を試みる。しかし、ウマロタウイルスの分離はバスやヒートブロックにて実施可能であり、専用

難しく、ウイルスの細胞変性効果を認めるまでに、の機器を必要としないこと、反応時間が60分以3代以上の継代を必要とすることも多い。手順の内であり、短時間で結果を得ることが可能である

煩雑さ、結果を得るまでに長時間を要すること、こと、および目視で判定することが可能であるとおよびウイルス分離の成功率の低さから、研究目いう特長を有する。VP4遺伝子のP[12]型を標的的以外で実施されることはほとんどない。

としたプライマーセットが開発されており、G型に関係なく、ウマロタウイルス遺伝子を検出可能である。後述する簡易診断キットより検出感度が２）電子顕微鏡による観察（図1）高い。

感染子馬の糞便には多量のウイルスが含まれる
ため、直接観察することにより診断可能である。
しかしながら、電子顕微鏡を有している施設が少ないため、一般的に実施困難な診断法である。
３）RT-PCR（reverse transcription-polymerase
chain reaction）法（図5）
代表的な遺伝子診断法であり、1日で結果を得ることができる。Tsunemitsuらが開発したSeminested RT-PCR法によって、ウイルスのG3とG14
8

1：G3型のウイルスを検体とした1st RT-PCRの結果
2：G14型のウイルスを検体とした1st RT-PCRの結果＊1st RT-PCRでは、G3とG14型の区別はできない。陽性の場合、G型に関係なく、1062bp付近にバンドが確認できる。
3：1を用いた2nd PCRの結果
G3型の場合、374bp付近にバンドが確認できる。
4：2を用いた2nd PCRの結果
G14型の場合、582bp付近にバンドが確認できる。
＊2nd PCRのバンドの大きさの違いによってG型の区別を行う。
M：マーカー
図5. Semi-nested RT-PCR法の結果

図 6.

RT-LAMP 法によるウマロタウイルスの検査結果
左 4 検体（緑色）が陽性，右 4 検体（茶色）が陰性

9５）簡易診断キット
ヒトロタウイルス診断用簡易診断キットがウマ原理とする迅速診断キットと比較すると、ディッ

ロタウイルス診断に応用可能である。簡易診断

プスティック'栄研'ロタは、100倍程度検出感度がキットによる診断には、専用の試薬や装置が必要高い。しかしながら、遺伝子診断法と比較するとなく、15分程度で診断可能であるという特長があ

検出感度は低く、陰性だからといっても完全にウる。ウマロタウイルスはA群ロタウイルスに分類

マロタウイルスを否定することはできない。牧場されるため、A群ヒトロタウイルスを検出する迅

内で連続して子馬が下痢等の症状を示し、そのう

速診断キットすべてがウマロタウイルス病診断に

ち1頭でも簡易診断キットでウマロタウイルス陽も応用可能ではないかと思われるが、製品によっ性であった場合、他の子馬もウマロタウイルスにてウマロタウイルスの検出感度は大きく異なるた

感染していると考えて対策を行うべきである。

め、注意が必要である。

③血清学的診断1980年代後半にラテックス凝集反応を原理としたキット（図7）がウマロタウイルス病診断に

感染馬の急性期および回復期の血清を用いて、有用であると報告されているが、検出感度が低い

中和試験や補体結合反応によって診断する。しかこと、および判定困難な例があることが指摘されし、手技の煩雑さ、および時間を要することから、ていた。近年さまざまな感染症診断に汎用されて診断法としては用いられない。ワクチン効果の検いるイムノクロマト法は、検体と標識抗体を反応証など、研究目的で実施されることが多い。

させた混合液を滴下し、毛細管現象によってメン
ブレン上を移動させ、テストラインにおいて目的抗原を捕捉し、発色させることにより判定する。
現在日本で市販されているイムノクロマト法を原理としたヒトロタウイルス診断用簡易診断キットのうち、ディップスティック'栄研'ロタ（栄研化学）
が最も高感度にウマロタウイルスを検出することが報告されている（図8）。ラテックス凝集反応を

図 7. ラテックス凝集反応を原理とした簡易診断法（ロタレッ
クスドライ、積水メディカル） 左：陽性，右：陰性

図 8. イムノクロマト法を原理とした簡易診断キット（ディップス
ティック' 栄研 'ロタ、栄研化学） 左：陽性，右：陰性

10

７

予防
なっている。妊娠馬はワクチン接種を受けること①ワクチン

により、ウマロタウイルスに対する抗体を豊富に前述したように、日本において1990年代前半

含んだ初乳を泌乳する。子馬はその初乳を飲むこまではG3P[12]のウイルスが支配的に流行していとにより抗体が付与され、ウマロタウイルスに起た。外殻蛋白質VP7およびVP4は中和抗体を誘導因する下痢症の予防および症状の緩和を図る。妊することから、流行株のGおよびP型の一致がワ娠馬に接種する本ワクチンは特殊であるが、生後クチン株選定に重要と考えられており、当時の疫間もない子馬にワクチンを接種しても、免疫機能学情報を基に、G3P[12]型のRVA/Horse-tc/JPN/が幼弱なためにうまく免疫されないこと、および

HO-5/1982/G3P[12]（HO-5）株をホルマリンでウマロタウイルスによる下痢症は生後数日から起不活化したワクチンが子馬の下痢予防のためにこるため、子馬がワクチンによって免疫される前開発され、2001年から市販されている（ウマロに感染してしまう可能性があることから、現行のタウイルス病不活化ワクチン、日生研）。本ワク

方法になっている。

チンは、妊娠馬に対して分娩の1 ～ 2 ヵ月前まで

Imagawaら は、G3P[12]で あ るHO-5株 の 感 染に4週間隔で2回筋肉内に接種するプログラムと実験から、ワクチン接種により症状の軽減および表２. ワクチン接種およびワクチン未接種母馬から生まれた子馬に対する表2. ワクチン接種およびワクチン未接種母馬から生まれた子馬に対するウマロタウイルス感
ウマロタウイルス感染実験
染実験

ワクチン群

ワクチン未接種群

*

馬番号

日齢

初乳摂取

下痢*

VI**

子馬の抗体価***

1

7

有

3

0

5120

2

4

有

6

0

10240

3

10

有

4

0

10240

4

39

有

0

0

5120

5

31

有

0

1

2560

6

33

有

0

0

1280

7

2

有

9

0

320

8

11

有

9

0

160

9

6

無

11

3

<10

10

7

無

7

3

<10

11

72

無

4

4

<10

12

63

無

2

6

<10

4

<10

無
13
39
4
症状の重軽に関係なく下痢または軟便を認めた日数** ウイルスが分離された日数*** 感染実験開始時の子馬の血清中ELISA抗体価
なお、この表はImagawa, H. et al. 1999. Passive immunity in foals of mares
immunized with inactivated equine rotavirus vaccine. pp. 201-205. In : Equine
Infectious Disease VIIIより引用し、一部改編したものである。
11

表３.
表3.

ワクチン接種前後の妊娠馬の中和抗体価

ワクチン接種前後の妊娠馬の中和抗体価

ワクチン接種前抗体価
馬番号

ウイルス株名
①

②

③

④

⑤

GMT**

*1 RVA/Horse-tc/JPN/HO-5/1982/G3P[12]

160

160

40

80

160

106

2 RVA/Horse-tc/JPN/No.1/2010/G3P[12]

160

320

160

40

160

139

3 RVA/Horse-tc/JPN/No.13/2010/G3P[12]

320

320

160

80

160

184

4 RVA/Horse-tc/JPN/No.24/2010/G14P[12]

160

80

80

40

80

80

5 RVA/Horse-tc/JPN/No.50/2010/G14P[12]

160

80

80

40

80

80

ワクチン接種後抗体価
馬番号

ウイルス株名
①

②

③

④

⑤

GMT

1 RVA/Horse-tc/JPN/HO-5/1982/G3P[12]

1280

640

640

640

640

735

2 RVA/Horse-tc/JPN/No.1/2010/G3P[12]

2560

1280

1280

320

640

970

3 RVA/Horse-tc/JPN/No.13/2010/G3P[12]

2560

1280

1280

320

640

970

4 RVA/Horse-tc/JPN/No.24/2010/G14P[12]

640

160

640

80

160

243

5 RVA/Horse-tc/JPN/No.50/2010/G14P[12]

640

320

320

80

160

243

* 1はワクチン株、2および3は2010年下痢便より分離されたG3P[12]ウイルス、4および5は2010年下痢便より分離されたG14P[12]ウイルス** GMT：5頭の中和抗体価の幾何平均値
なお、この表はNemoto, M. et al. 2012. Acta Vet. Scand. 54: 63.より引用し、一部改編したものである。

ウイルス排出量の低下を認めている（表2）。さじG3P[12]の み な ら ず、G14P[12]の ウ イ ル ス にらに野外応用試験において、ワクチン接種母馬か対しても妊娠馬において、血清中で中和抗体が誘ら生まれた子馬の群は、非接種母馬から生まれ導されることが確認された。この報告では、ワクた子馬の群と比較し、G14のウイルスに感染してチン接種馬の初乳および初乳摂取子馬の血清は用も明らかに症状が軽かったことが報告されていいておらず、抗体が子馬に実際に移行しているかる。これはG型に関係なくP型（P[12]）が同一では確認していない。しかしながら、妊娠馬の血清あるためと考えられるが、それを検証した研究は抗体価は初乳および子馬血清の抗体価と密接に関少ない。近年、ワクチンを接種した妊娠馬血清

連しているため、妊娠馬の血清抗体価から子馬ののG14P[12]ウイルスに対する中和抗体価を測定

免疫状態は推測可能である。そのため、現在のワ

し、抗体応答を調査した報告がある。その報告

クチンはG3P[12]のウイルスと比較して劣るもの

では、妊娠馬のワクチン接種後のG14P[12]ウイの、G14P[12]のウイルスに対する抗体も子馬にルスに対する中和抗体価は、ワクチン株と同じ付与していると推測される。

G3P[12]のウイルスに対する抗体価と比べて1/2

海 外 で は、 ア メ リ カ、 イ ギ リ ス お よ び ア イ～ 1/3の値であった（表3）。すなわち、現在のル ラ ン ド に お い て、 ウ マ ロ タ ウ イ ル ス で あ る

ワクチンを接種することにより、ワクチン株と同

RVA/Horse-tc/GBR/H-2/1976/G3P[12]株 を 含
12

む 不 活 化 ワ ク チ ン が、 ア ル ゼ ン チ ン に お い ての接触ではウイルスを不活化しない。グルタラー

は、同株に加え、サルロタウイルスであるRVA/

ルを用いて内視鏡等の器具を消毒する際は、室温

Simian-tc/ZAF/SA11/1958/G3P[2]株 お よ び ウ

で1時間以上浸漬する必要がある。なお、当たり

シロタウイルスであるRVA/Cow-tc/USA/NCDV-前のことであるが、消毒薬は人体や環境に悪影響

Lincoln/1967/G6P[1]株 を 含 む 不 活 化 ワ ク チを及ぼす可能性があるので、定められた方法に従ンが市販されている。日本も含め、G3P[12]とうことが必要である。

G14P[12]両方のウイルスをワクチン株として採用している国はない。G14P[12]のウイルスを加えたワクチンの効果については、今後の検討課題
である。

②防疫対策
感染子馬の下痢便中には大量のウイルスが含まれ、かつ排出されたウイルスが環境中において数ヵ月安定であることから、ウマロタウイルスの伝播力は強く、適切な防疫対策を実施しない場合、牧場中の子馬に次々と感染が拡大する。感染拡大を阻止するためには、本病の診断を迅速に行い、陽性の場合、適切な防疫対策を実施することが重要である。防疫対策として、感染子馬の隔離や馬房の消毒等が挙げられる。他には、一つの牧野に対する放牧頭数を減らすことで本病の大規模発生の予防が可能となる。
ウマロタウイルスに対しては、牧場で汎用されている逆性せっけん系消毒薬は消毒効果が低い。
次亜塩素酸ナトリウム等の塩素系消毒薬、ヨード
ホール等のヨウ素系消毒薬、エタノール等のアルコール類、グルタラール等のアルデヒド製剤が消毒薬として有効である。塩素系およびヨウ素系消毒薬は有機物の混入により、消毒効果が低下する
ため、踏込槽で使用する場合は使用濃度を濃くすること、および消毒薬を頻繁に交換することが必要となる。アルコール類は手指の消毒に適している。グルタラールは有機物の混入に比較的強く、消毒効果が高いものの、低温条件下および短時間
13

参考文献
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おわりに
ウマロタウイルスの歴史は、1975 年にイギリスにおいて子馬の下痢便からウイルスが発見されたことが始まりです。この発見以降、子馬の下痢便中にウマロタウイルスが存在することが各国から相次いで報告されています。日本においては、今川らが 1981 年に北海道日高地方で通称「白痢症」と呼ばれていた子馬の下痢便からウマロタウイルスを分離することに成功
し、この研究が端緒となりウマロタウイルスの研究が本格的に始まりました。その後、病原性の研究、疫学調査、診断法の開発等を経て、2001 年にワクチンが発売されました。今川浩博士が執筆された第 1 版は 2000 年に発行されていますので、発行時ワクチンはまだ発売されていませんでした。今回の第 2版では、第 1 版発行後の新知見、特に疫学、診断法、そしてワクチンの項目を中心に全面的に改訂しました。さらに詳しく
ウマロタウイルスについて知りたい方は、参考文献をご覧いただければと思います。
本冊子を作成するに当たり、これまで共同研究を実施してきた動物衛生研究所の恒光裕博士、日高地区農業共済組合、JRA
日高育成牧場の方々に深謝いたします。
最後に、本冊子を読んでいただいた方のウマロタウイルスに対する理解が深まりましたら、著者としてこれ以上の喜びはありません。

日本中央競馬会
競走馬総合研究所栃木支所

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根本

学

刊行の馬感染症シリーズ
１．馬伝染性貧血診断のための寒天ゲル内沈降反応の術式
２．馬伝染性子宮炎
３．馬ウイルス性動脈炎
４．馬のサルモネラ症
５．ベネズエラ馬脳炎
６．アフリカ馬疫
７．馬鼻肺炎８．馬鼻肺炎ウイルス感染症のための寒天ゲル内沈降反応の術式と応用
９．馬伝染性貧血診断のための寒天ゲル内沈降反応の術式（第２版）
10．馬のピロプラズマ病
11．馬の水胞性口炎
12．馬の寄生虫病
13．馬ウイルス性動脈炎（第２版）
14．馬のポトマック熱
15．消毒法Ｑ＆Ａ
16．馬トリパノゾーマ病
17．馬インフルエンザ
18．馬の感染症
19．腺疫
20．子馬のロドコッカス感染症
21．馬鼻肺炎（第２版）
22．馬伝染性子宮炎（第２版）
23．馬原虫性脊髄脳炎
24．馬パラチフス
25．馬の日本脳炎
26．馬ピロプラズマ病（第２版）
27．馬のゲタウイルス感染症
28．馬ロタウイルス感染症
29．馬ウイルス性動脈炎（第２版・補訂版）
30．馬伝染性貧血の診断術式（第３版）
31．馬の水胞性口炎（第２版）
32．馬の感染症（第２版）
33．腺疫（第２版）
34．馬原虫性脊髄脳炎（第２版）
35．馬のウエストナイルウイルス感染症
36．馬の真菌症
37．馬の感染症（第３版）
38．馬インフルエンザ（第２版）
39．馬鼻肺炎（第３版）
40．馬パラチフス（第２版）
41．消毒法Ｑ＆Ａ（第１版・補訂版）
42．馬ウイルス性動脈炎（第３版）
43．馬伝染性貧血の診断術式（第３版・補訂版）
44．馬の寄生虫病（第１版・補訂版）
45．アフリカ馬疫（第２版）
46．馬のゲタウイルス感染症（第１版・補訂版）
47．腺疫（第３版）
48．馬ピロプラズマ病（第３版）
49．馬インフルエンザ（第３版）
50．消毒法Ｑ＆Ａ
51．馬原虫性脊髄脳炎（第 2 版・補訂版）
52．馬伝染性子宮炎（第３版）
53．馬の感染症（第４版）
54．馬の日本脳炎（第 2 版）

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