2021 年 30 巻 2 号（通巻 89 号）

ISSN 1342–2634

日本バイオイメージング学会

バイオイメージング■目次■

第 30 回日本バイオイメージング学会学術集会 ……………… 9
ご案内……………………………………………………………… 11
第 30 回学術集会プログラム …………………………………… 17
要旨………………………………………………………………… 27
発表者索引……………………………………………………… 97

総会資料………………………………………………………… 103
学会定款………………………………………………………… 114

─7─■第 30 回日本バイオイメージング学会学術集会■

主催：日本バイオイメージング学会
会期：2021 年 9 月 9 日（木）～ 9 月 11 日（土）◆学術講演会：9 月 9 日（木）～ 9 月 10 日（金）◆公開講座 ：9 月 11 日（土）開催方法：オンライン（Zoom）
大会長：田中 直子（大妻女子大学 家政学部 食物学科）
副大会長：細谷 夏実（大妻女子大学 社会情報学部 社会情報学科）
学術集会ホームページ：https://30thbioimaging.wixsite.com/my-site-2

参加費：公開講座（無料）
学術集会
一般（正会員：4,000 円、非会員：6,000 円）
大学院生および学部 5 年生以上（学生会員：3,000 円、非会員：5,000 円）
学部 4 年生以下：無料（発表する場合は大学院生に準ずる）

─9─

■第 30 回日本バイオイメージング学会学術集会運営委員会■

大会長：田中 直子（大妻女子大学 家政学部 食物学科）
副大会長：細谷 夏実（大妻女子大学 社会情報学部 社会情報学科）
運営委員
岡浩太郎（慶應大学 理工学部 生命情報学科）

根本

知己（自然科学研究機構 生命創成探究センター・生理学研究所）

永井健治（大阪大学 産業科学研究所）

太田

善浩（東京農工大学大学院工学研究院 生命機能科学部門）

加藤薫（産業技術総合研究所 バイオメディカル研究部門）

樋口ゆり子（京都大学大学院 薬学研究科）
鈴木亮（帝京大学 薬学部）

船津高志（東京大学 薬学部）

加藤晃一（自然科学研究機構 生命創成探究センター・分子科学研究所）

洲崎悦子（就実大学 薬学部）

行方衣由紀（東邦大学 薬学部）
事務局：伊香賀 玲奈（大妻女子大学 短期大学部）

─ 10 ─

■ご案内■
１．受付・参加費（１）本大会はオンライン開催のため、事前登録のみとさせていただきます。大会ホーム
ページの「参加方法」をご覧いただき、〆切までに参加登録をお願いします。
◆参加費○公開講座：無料○学術集会：一般（正会員：4,000 円、非会員：6,000 円）
大学院生および学部 5 年生以上（学生会員：3,000 円、非会員：5,000 円）
学部 4 年生以下：無料（発表する場合は大学院生に準ずる）（２）招待講演を除き、登壇者は日本バイオイメージング学会会員に限ります。
（３）事前参加登録をされた方には、8 月下旬頃に参加 ID を通知いたします。参加 ID
は、学会参加時に必要となりますので、紛失されないようお気を付けください。
（４）Zoom 参加方法（Zoom 操作手順）は、9 月上旬にメールでご連絡します。
２．発表者へのご案内（１）シンポジウム、奨励賞受賞講演
講演時間は時間厳守にてお願いいたします。Zoom の画面共有にて発表していただ
きます。
（２）一般演題（ポスター発表）
Zoom のブレイクアウトルームを使用し、参加者との画面共有により発表していただきます（一つの演題につき、一つのブレイクアウトルームを設定します）。発表資料作成方法につきましては、8 月中旬以降メールでご連絡します。
接続テストを 9 月 8 日に予定しております。詳細は改めてご連絡します。
３．ベストイメージング賞
・ポスター発表の中から決定いたします。
・ベストイメージング・浜ホト賞（浜松ホトニクス株式会社提供）、ニコン賞（株式会社
ニコンソリューションズ提供）、カールツァイス賞（カールツァイス株式会社提供）、
OLYMPUS 賞（オリンパス株式会社提供）の 4 つの賞が予定されています。
・受賞演題は、参加者全員による投票で決定します。
投票方法：Google フォームによる投票。URL は、学会開催中にお示しします。
投票期間：9 月 9 日 11:30～9 月 10 日 16:00
・受賞者の発表と表彰は、9 月 10 日 17:00～の懇親会において行います。

─ 11 ─

４．総会
9 月 10 日（金）15:30～16:00
５．奨励賞受賞講演
9 月 10 日（金）16:00～17:00
６．懇親会
・学会に引き続き、Zoom を使ってオンライン懇親会を開催いたします。
シンポジウム／ポスターセッションのテーマや自由に語れるテーマを設定したブレイ
クアウトルームを作成し、バイオイメージング学会の参加者同士が親睦を深められる場にしたいと思います。
・参加費無料・懇親会内でベストイメージング賞を発表いたしますので、ぜひご参加ください。
７．禁止事項・発表者の承諾無しに、発表内容を画面撮影（スクリーンショット含む）、録画、録音すること
・学会のミーティング ID やパスワードを他人と共有すること
８．免責事項
回線・機器の状況によっては映像等の不具合が発生する場合がありますので、安定したネットワーク環境での参加をお勧めいたします。その他インターネットトラブルや Zoom
接続不良等につきましては、十分なサポートができない可能性があることをご了承下さい。

─ 12 ─

■企業セミナー・展示■
１．企業セミナー
以下の企業に講演いただく予定です。
講演タイトルなど詳細は大会ホームページをご覧ください。
・オックスフォード・インストゥルメンツ株式会社（アンドール・テクノロジー事業部）
・株式会社ニコンソリューションズ
・カールツァイス株式会社
・浜松ホトニクス株式会社
・横河電機株式会社（五十音順、敬称略）

２．企業展示ポスターセッションの時間に、ブレイクアウトルームを使って展示をしていただく予定です。参加企業および詳細は大会ホームページをご覧ください。

─ 13 ─

第 30 回日本バイオイメージング学会学術集会
ベストイメージング賞スポンサーよりメッセージ

世界で初めてテレビに 「イ」 の字が映し出されてから約 1 世紀。 光技術は目覚ましく進
歩し、 21 世紀を 「光の世紀」 と呼ばしめるまでになりました。 これまで、 そしてこれからも、 浜松ホトニクスは光と共に人類未知未踏の技術を追い求めて発展を続けていきます。

（掲載は順不同です）

─ 14 ─

■プログラム■第 30 回日本バイオイメージング学会学術集会

─ 17 ─

日程表

第 30 回日本バイオイメージング学会学術集会プログラム◎学術集会プログラム
日時：9 月 9 日（木）9:50〜

9 月 10 日（金）18:30―――――――――――――――

オンライン開催

9 月 9 日（木） ―――――――――――――――

9:50
【開会】
開会あいさつ：バイオイメージング学会会長 岡浩太郎
会の進行について：第 30 回学術集会大会長 田中直子
10:00 〜 11:30【シンポジウム 1】Cutting-edges for volumetric imaging of brain and neural activity
座長：根本知己（自然科学研究機構 生命創成探究センター・生理学研究所）
S1-1. CUBIC-HistoVIsion：臓器・全身をカバーする 3 次元組織学技術〇洲崎悦生 1, 2
1
順天堂大・院医 生化学・生体システム医科学、2 理研 BDR 合成生物学研究 TS1-2. 自動球面収差補正による生体組織の屈折率推定〇毛内拡 11
お茶大・理S1-3. High-speed volumetric imaging of brain〇 Shi-Wei Chu 1, 2, 3
1
Department of Physics, National Taiwan University、2 Molecular Imaging Center, National Taiwan
University、3 Brain Research Center, National Tsing Hua University

11:30 〜 12:30【ポスターセッション 1】P1

植物の立体再構成システムを用いたミオシン XI 変異体草姿の定量解析〇吉田大一 1、國田樹 2、戸田真志 3、上田晴子 4、檜垣匠 5
1
熊本大・院・自然科学、2 琉球大・工、3 熊本大・総合情報統括センター、4 甲南大・理工、5 熊本大・
国際先端科学技術研究機構

P2

微小管結合タンパク質 RIC1 過剰発現による子葉器官および表皮細胞の形態変化○菊川琴美 1、曽我康一 2、今村寿子 3、檜垣匠 4
1
熊本大・院・自然科学、2 大阪市立大・院・理、3 九州大・院・医、4 熊本大・国際先端科学技
術研究機構

P3

シロイヌナズナ子葉における表皮細胞の形態形成初期の超微細構造解析○秋田佳恵 1、髙木智子 2、檜垣匠 3、馳澤盛一郎 4、永田典子 1
日本女子大・理、2 日本女子大・電顕、3 熊本大・IROAST、4 法政大・生命科学

1

P4

画像解析による超解像法 SRRF の in vivo イメージングへの適用○堤 元佐 1, 2、髙橋 泰伽 1, 2, 3、小林 健太郎 4、根本 知己 1, 2, 3, 4
自然科学研究機構 生理学研究所、2 自然科学研究機構 生命創成探究センター、3 総合研究大学院
大学 生理科学専攻、4 北海道大学 電子科学研究所1─ 18 ─

P5

多点走査型 2 光子顕微鏡を用いた生体脳のボリューム Ca2+ イメージング○安宅光倫 1, 2, 3、大友康平 1, 2, 3、榎木亮介 1, 2, 3、根本知己 1, 2, 3
総合研究大学院大学 生命科学研究科、2 自然科学研究機構 生命創成探究センター、3 自然科学研究機構 生理学研究所
1

P6

リピッドバブルと超音波を利用したがん組織内血管透過性促進法の開発○鈴木亮 1, 2、影山彩織 1、小俣大樹 1、宗像理紗 1、丸山一雄 1, 2
1
帝京大 薬、2 帝京大 先端総研

P7

免疫賦活化核酸搭載脂質ナノ粒子の抗腫瘍効果および生体内分布の検討○宗像理紗 1、小俣大樹 1、小山正平 2, 3、岡田欣晃 4、吉岡靖雄 4-8、青枝大貴 5、鈴木 亮 1, 9
帝京大 薬、2 阪大院 医、3 国立がん研セ 先端医療開発セ、4 阪大院 薬、5 阪大微研、6 阪大 先導、
7
阪大微研会、8 阪大 MEI、9 帝京大 先端総研

1

P8

高速原子間力顕微鏡を用いた糖転移酵素の分子構造動態解析○矢木宏和 1、渡辺大輝 2、Ganser Christian2、金 明美 1、吉田早希 1、佐藤匡史 1、梅澤芙美子 1, 2、
柚木康弘 3、守島 健 3、杉山正明 3、内橋貴之 2, 4、加藤晃一 1, 2
1
名古屋市立大学薬学部／大学院薬学研究科、2 自然科学研究機構生命創成探究センター、3 京都大学複合原子力科学研究所、4 名古屋大学大学院理学研究科

P9

物理化学的手法と分子動力学シミュレーションによるアガリクス由来βグルカンの立体構造
観測○松村義隆 1、井上広大 1、墨野倉誠 1、久保美香子 1、出村茉莉子 1、市岡隆幸 1、森本康幹 1、田代充 2、石橋健一 3、大野尚仁 3、小島正樹 1
1
東薬大・生命、2 明星大・理工、3 東薬大・薬12:30 〜 13:30【企業セミナー】
13:30 〜 15:10【第 30 回記念シンポジウム】バイオイメージングの今、そしてこれから
企 画：日本バイオイメージング学会企画委員会
委員長：鈴木亮（帝京大学 薬学部）
A-1. 未来の薬とバイオイメージング〇樋口ゆり子 1
1
京大・院 薬学研究科

A-2. ブラシノステロイド情報伝達の構造生物学と多階層アプローチへの展望〇宮川拓也 1
1
東京大学大学院農学生命科学研究科

A-3. 植物細胞生物学を起点とした画像の定量評価と機械学習〇檜垣匠 1
1
熊本大 国際先端科学技術研究機構

A-4. バイオイメージング研究の展開と本学会の取り組み〜次の 30 年のさらなる飛躍に向けて〜○岡浩太郎 11慶應義塾大学 理工学部

15:10 〜 15:30 ＜休憩＞
15:30 〜 16:30【ポスターセッション 2】P10

遊離脂肪酸が膵臓β細胞のミトコンドリア膜電位に与える影響〜トランス脂肪酸の影響〜
齋藤喜久恵 1、○鈴木真理子 2、永田莉子 1、川久保愛美 2、田中直子 1, 2
大妻女子大 家政、2 大妻女子大・院 人間文化研究1─ 19 ─

P11

大麦粉の腸内発酵による短鎖脂肪酸の増加は、L 細胞に発現する GPR43 を介して GLP-1 分
泌、細胞内 Ca2+ 放出量を増加させる○三尾 建斗 1、田中 直子 1, 2、青江 誠一郎 1, 2
1
大妻女子大・院 人間文化研究、2 大妻女子大 家政

P12

メラノソーム分解の可視化システム○川口馨加 1、渡辺実夢 1、古川紗帆 2、竹森洋 1, 2、平田洋子 1, 2、古田享史 1, 2
1
岐阜大・院 自然科学技術、2 岐阜大 工

P13

MitoMM2 によるマイトファジー検出法の開発○前田美和 1、鈴木麻由 1、今石潤 2、竹森洋 1, 2
1
岐阜大・院 自然科学、2 岐阜大 化学生命

P14

ATX-Ⅱは Na+/Ca2+ 交換機構の逆方向回転モードの活性化を介して肺静脈心筋細胞の細胞内Na+ 及び Ca2+ 濃度を上昇させる○斎藤太郎、大場亜衣子、高野裕大、濵口正悟、行方衣由紀、田中光
東邦大 薬 薬物P15

試料表面の屈折率差が近赤外蛍光 CT に及ぼす影響○竹松真歩 1、梅澤雅和 1、世良俊博 2、横田秀夫 3、大久保喬平 1、上村真生 1、曽我公平 1
1
東京理大・先進工・マテ工、2 九大・工・機械工、2 理研・光量子・画像情報処理

P16

疎水性高分子の立体構造が OTN 近赤外蛍光色素の内包特性に及ぼす影響○市橋理江 1、梅澤雅和 1、植屋佑一 2、高本英司 2、大久保喬平 1、上村真生 1、曽我公平 1
1
東京理大・先進工・マテ工、2JSR 株式会社・筑波研究所

P17

ライブセルイメージングを用いたレーザー光毒性の波長依存性○山口樹也 1、大坂昇 1、松山哲也 1、和田健司 1、岡本晃一 1、川喜多愛 2、村田香織 2、杉本憲治 2
1
大阪府立大学工学研究科、2 大阪府立大学生命環境科学研究科

P18

赤色 FRET 型 ATP プローブの開発とエネルギー代謝の Dual-FRET イメージング○新藤豊 1、衛澤峰 1, 2、堀田耕司 1、岡浩太郎 1, 2, 3
1
慶大 理工、2 早大 理工、3 高雄医大 医学

16:30 〜 18:00【シンポジウム 2】イメージングと操作で見るミトコンドリア機能
座長：太田善浩（東京農工大学大学院 工学研究院 生命機能科学部門）
田中直子（大妻女子大学 家政学部 食物学科）
S2-1. ミトコンドリア構造の動的制御とその生理的意義

觀音裕考 1、Pal Soumyadip 1、丸山翔太 1、石原孝也 1、〇石原直忠 11
大阪大・院 理・生物科学

S2-2. イメージングで見つかったミトコンドリアの細胞保護機能〇太田善浩 1、アクリマ・ヤンナトゥル 1
1
東京農工大・院・生命工学専攻

S2-3. ミトコンドリア機能を操作する Drug Delivery System〇山田勇磨 1、原島秀吉 1
1
北大院 薬―――――――――――――――

9 月 10 日（金） ―――――――――――――――

9:00 〜 10:30【シンポジウム 3】様々な手法で見る生体試料
座 長：加藤薫（産業技術総合研究所 バイオメディカル研究部門）

─ 20 ─

S3-1. 走査電子顕微鏡の生物応用〇甲賀大輔 11
旭川医大 医 顕微解剖S3-2. アポダイズド位相差顕微鏡による無染色・非侵襲での細胞内微細構造動態の観察〇島﨑健太朗 1、加藤薫 2、中村優子 1、齊藤恭子 1、深澤征義 1、花田賢太郎 1,3
1
感染研・細胞化学、2 産総研・バイオメディカル、3 感染研・品管S3-3. 有機合成小分子を用いた超解像光学顕微鏡による生体試料の観察〇佐藤良勝 1, 2
1
名古屋大 WPI-ITbM、2 名古屋大・院 理学研究科

S3-4. 機械学習によって明視野細胞画像から遺伝子型の違いを判別できるか

鈴木吾大 2、齋藤裕 1,3,4、〇光山統泰 1
1
産業技術総合研究所 人工知能研究センター、2 一般財団法人シネコカルチャー、3 産総研・早大
生体システムビッグデータ解析 オープンイノベーションラボラトリ、4 東京大学大学院新領域創成科学研究科

S3-5. 新規プローブの開発と応用による低分子量生体分子の可視化解析〇塗谷睦生 1, 2, 3
1
慶應義塾大 医学部、2 横浜国大 環境情報、3 JST さきがけ

S3-6. 高輝度蛍光ナノ粒子を用いた病理解析による乳癌内分泌療法の耐性予測〇権田幸祐 1、北村成史 1、石田孝宣 2、多田寛 2
1
東北大・院 医学系 医用物理学分野、2 東北大・院 医学系 乳腺・内分泌外科学分野

10:30 〜 11:30【ポスターセッション 3】
P19

自発的 Ca2+ transient の発生における Na+/Ca2+ exchanger の役割―モルモット洞房結節細胞での検討―○尾高椋介、濵口正悟、行方衣由紀、田中光
東邦大 薬 薬物学

p20

ショウガ辛味成分ショウガオールが骨格筋の運動機能の質に与える影響○栗山恵弥 1, 2、深井梨沙 1、宮園佳歩 1、泉佐和 1、山口真由 1、田中光 3、田中直子 11
大妻女子大・食物、2 大妻女子大・院 人間文化研究、3 東邦大・薬P21

肺微小循環動態の高解像度かつ高フレームレート in vivo イメージング○澤麻理恵 1、牛山明 2、服部研之 1
1
明治薬科大学、2 国立保健医療科学院

P22

劇症型急性肺炎モデルマウスにおける免疫炎症細胞浸潤のイメージング解析○長谷川明洋 1、荻野英賢 1、中山俊憲 2
山口大学大学院医学系研究科、2 千葉大学大学院医学研究院

1

P23

生物発光共鳴エネルギー移動（BRET）による高光度化バクテリアルシフェラーゼを用いた
自発光イメージング○加来友美、杉浦一徳、円谷徹之、長部謙二、永井健治
大阪大 産業科学研究所

P24

Heterogeneity and dynamics of the apoplastic ﬂuid pH in diﬀerent root zones revealed by abioluminescent ratiometric indicator
Quang Tran 1, Kenji Osabe 1, 2, Tetsuyuki Entani 2, Tetsuichi Wazawa 2, Mitsuru Hattori 1, 2, Takeharu Nagai 1, 2
Graduate School of Engineering, Osaka University, 2 The Institute of Scientiﬁc and Industrial Research(SANKEN), Osaka University1

P25

糖鎖リガンド sLeX mimic と小胞体局在シグナルペプチド KDEL を利用した小胞体へのタン
パク質デリバリー○内田結、森川知彦、樋口ゆり子、山下富義
京都大学大学院薬学研究科

─ 21 ─P26

Development of an “OFF-ON-OFF” ﬂuorescence switch for real-time visualization of
degradation of short-lived proteins in living cells○ Shahi Imam Reja1, Yuichiro Hori1, 2, Kohei Yamasaki1, Miyako Nishiura1, Kazuya Kikuchi1, 2, 3
1
Division of Applied Chemistry, Graduate School of Engineering, 2Immunology Frontier Research Center,
3
Quantum Information and Quantum Biology Division, Osaka University, Osaka, Japan

P27

微小血管を可視化する造影剤の開発○田邉瑠里子 1, 2、澁谷仁寿 2、後藤拓 1、田村勝 2、野村慎太郎 1, 2
長浜バイオ大学 アニマルバイオサイエンス学科、2 理化学研究所 バイオリソース研究センター

1

11:30 〜 12:30【企業セミナー】
12:30 〜 13:00 ＜休憩＞
13:00 〜 14:30【シンポジウム 4】細胞内の非膜オルガネラをみる
座長：樋口ゆり子（京都大学大学院 薬学研究科）
S4-1. 細胞内の水の測定から細胞内夾雑環境・液−液相分離を探る〇中林孝和 11
東北大院薬S4-2. 非膜オルガネラでの転写制御の解明〇井手聖 1, 2、今井亮輔 1, 2、大地弘子 1、前島一博 1, 2
1
遺伝研・遺伝メカニズム、2 総研大・生命科学

S4-3. 生きた細胞内で非膜オルガネラを「操る」合成生物学技術の開発〇中村秀樹 1, 2
1
京都大学 工 合成・生物化学、2 JST ERATO 浜地ニューロ分子技術

14:30 〜 15:30【ポスターセッション 4】
P28

複数の精神・神経疾患に関わる Rab39B の細胞内局在の解析○宮地美沙 1, 2、間裕太郎 2、鯉沼真吾 2、中村岳史 2
東京理科大 薬、2 東京理科大 生命研

1

P29

複数の神経・精神疾患に関わる Rab39B の FRET バイオセンサーの開発○鯉沼真吾 1、間裕太郎 1、和田直之 2、福田光則 3、中村岳史 1
東京理科大学生命医科学研究所、2 東京理科大学理工学部、3 東北大学大学院生命科学研究科

1

P30

Ca2+, ROS を介したゼニゴケの迅速なストレス応答性長距離シグナル伝達機構の解析○渡邉健志郎 1、長谷川晃汰 1, 2、進藤大輝 1, 2、橋本研志 1, 2、朽津和幸 1, 2
1
東京理科大・院・理工・応用生物科学、2 東京理科大・院・理工・農理工学際連携

P31

ゼニゴケの細胞分裂組織における Ca2+ 動態の時空間パターンの解析：
自発的 Ca2+ スパイクの発見○吉沢優花 1, 2、橋本研志 1、2、萩原雄樹 1, 2、山下優音 1、朽津和幸 1, 2
東京理科大・院・理工・応用生物科学、2 東京理科大・院・理工・農理工学際連携

1

P32

タンパク質結合性を有する新規水溶性蛍光材料の開発○竹腰 和馬 1、矢下 亜紀良 1、川上 隼人 1、河合 功治 1、村井 利昭 21
ミヨシ油脂株式会社、2 岐阜大学

P33

ウイルスの変異を考慮した COVID-19 治療薬の in silico 設計○椎野颯真 1、五味晶彦 1、星まどか 1、今野翔 2、林良雄 2、小島正樹 1
1
東京薬科大 生命科学、2 東京薬科大 薬学─ 22 ─

P34

広視野型 2 光子励起ライトシート顕微鏡の開発○齋藤卓 1, 2、今村健志 1, 2
1
愛媛大・院 医学系研究科、2 愛媛大・附属病院 先端医療創生センター

P35

ADMET 特性を考慮した COVID-19 治療薬の in silico 設計○五味晶彦 1、坂田喬亮 1、星まどか 1, 椎野颯真 1、今野翔 2、林良雄 2、小島正樹 1
東京薬科大学 • 生命科学部、2 薬学部

1

P36

シンクロトロン X 線μ CT 法によるラット大腿骨内に高濃集するウラン分布の可視化○大澤大輔 1、上原章寛 2、小西輝昭 1、寺田靖子 3、星野真人 3、上杉健太朗 3、武田志乃 2
1
量研機構 量子生命科学研究所、2 量研機構 放射線医学研究所、3 高輝度光科学研究センター

P37

A highly-sensitive genetically encoded temperature indicator exploiting a temperatureresponsive elastin-like polypeptide○ Cong Quang Vu1, 2, Shun-ichi Fukushima2, Tetsuichi Wazawa2, and Takeharu Nagai1, 2
1
Graduate School of Frontier Biosciences, Osaka University, 2 SANKEN (The Institute of Scientiﬁc andIndustrial Research), Osaka University

15:30 〜 16:00【総会】
16:00 〜 17:00【奨励賞受賞講演】
座長：賞選考委員会
L-1. 超音波とマイクロバブルを用いたイメージング・治療システムの開発〇小俣大樹 11
帝京大学 薬学部 薬物送達学研究室

L-2. 蛍光ゆらぎ解析による細胞およびソフトマター内分子動態解析〇山本条太郎 1
産総研 健康医工学研究部門 バイオイメージング研究グループ

1

17:00 〜 18:30【懇親会】 オンライン開催
ベストイメージング賞発表―――――――――――――――

9 月 11 日（土） ―――――――――――――――◎公開講座プログラム「味と匂いのバイオイメージング」（参加無料）
日時：9 月 11 日（土）10:00 〜 12:00 オンライン開催
10:00 〜 12:00【開会】
開会あいさつ：バイオイメージング学会副会長 洲崎悦子
会の進行について：第 30 回学術集会大会長 田中直子
座長：田中直子
O-1. 脳活動と行動実験からみたヒトの味嗅覚の知覚システム〇小早川達 1
1
国立研究開発法人 産業技術総合研究所 人間情報インタラクション研究部門

─ 23 ─

O-2. オルガノイド培養法を用いた消化管味センサー細胞の機能解析〇岩槻健 1
1
東京農業大学 応用生物科学部 食品安全健康学科

O-3. 味やニオイの刺激で変わる！動物の脳活動〇溝口尚子 1
1
明海大 歯学部 生理学分野【閉会】閉会あいさつ：第 30 回学術集会大会長

田中直子◎本学術集会についての問い合わせ先
第 30 回日本バイオイメージング学会学術集会事務局

E-mail: 30th.bioimaging@gmail.com（できるだけ電子メールでの連絡をお願い申し上げます）
URL：https://30thbioimaging.wixsite.com/my-site-2〒 102-0075 東京都千代田区三番町 12
大妻女子大学家政学部食物学科 内
田中 直子 方TEL: 03-5275-6138

─ 24 ─

■学術講演会要旨■

第３０回 記念シンポジウム「バイオイメージングの今、そしてこれから」奨励賞受賞講演

シンポジウム１「Cutting-edges for volumetric imaging of brain and neural activity」

シンポジウム２「イメージングと操作で見るミトコンドリア機能」

シンポジウム３「様々な手法で見る生体試料」

シンポジウム４「細胞内の非膜オルガネラをみる」

A-1
未来の薬とバイオイメージング
Bioimaging and next generation therapeutics○樋口ゆり子
京大・院 薬学研究科○Yuriko Higuchi
Graduate School of Pharmaceutical Sciences, Kyoto University
バイオイメージング学会の 30 回目学術集会での記念シンポジウムにおいて講演の機会を頂いたことに感謝申し上げると共に、これまで本学会を支えて来られた先生方、関係者の方に感謝と敬意の念を示したいと思います。
本学会の魅力は、バイオイメージングというキーワードで接点として、標識、検出、解析など
イメージング技術を開発する研究者からイメージングを利用した生命現象の解明や評価をおこなう研究者まで、多様な研究および研究者に出会えることです。この学会に参加するようになって、私も多くを学び、視野を広げることができました。
私は、薬物を適切なタイミングで適切な場所に送達して最大の治療効果を得るためのドラッグデリバリーシステム開発を専門としており、薬物の細胞内または生体内の分布の可視化、薬理効
果およびそのメカニズムの可視化でバイオイメージングに興味を持つようになりました。例えば、抗体は、特定の分子に結合して治療効果を発揮する分子標的医薬として期待されています。しかし、細胞膜をほとんど透過しないため、創薬ターゲットは細胞膜または細胞外の分子に限られています。したがって、抗体を細胞内に送達することができれば、細胞内の分子をターゲットとした治療が可能になり、抗体医薬の応用が一気に広がることが期待できます。私たちも投与部位から細胞内の標的部位までシームレスに抗体を送達する仕組みを開発しています。ここでは、投与後の抗体の生体内および細胞内分布の評価においてイメージングが効力を発揮します。さらに、標的分子に結合した後の転写活性、酵素活性など治療効果に直結する細胞内の分子機構を同一個体において経時的に評価を行う場合にイメージングが有効です。また、私たちは、細胞治療において、生体内に投与した細胞の体内動態制御法の開発も行っています。この研究においても、治療細胞の体内分布だけでなく、治療細胞内の分子シグナルの評価においてイメージングが極めて重要な役割を果たします。現在、バイオ医薬品の開発が進み、承認も急速に増えています。また、
低分子化合物でも特定の分子や核酸配列に作用する医薬品も開発されています。そのような中で、今後バイオイメージング技術への期待も高くなり、重要なポジションを占めていくと思われます。
本講演では、薬学研究の視点から、バイオイメージングの今、そしてこれからについて話題を提供し、みなさんとディスカッションしたいと考えています。

─ 27 ─

A-2
ブラシノステロイド情報伝達の構造生物学と多階層アプローチへの展望
Structural biology of brassinosteroid signaling and the future prospects for multiscale
approaches○宮川拓也
東京大学大学院農学生命科学研究科○Takuya Miyakawa
Graduate School of Agricultural and Life Sciences, The University of Tokyo
構造生物学はタンパク質や核酸、それらに結合して機能する多様な生体分子や薬剤などの構造を 10‒10 m オーダーの高分解能で可視化し、生命現象を構築する化学反応と分子間相互作用、さらにそのダイナミクスを理解する上で重要な役割を果たしている。我々は、小分子化合物が制御する細胞応答機構について、植物自身がつくり出し生理活性物質として機能する「植物ホルモン」のシグナル伝達経路を中心に、構造生物学を基軸とした解析を進めている。
ブラシノステロイド（BR）は植物のステロイドホルモンの一種で、暗所において種子胚から発生した胚軸の伸長を促進する。BR の合成またはシグナル伝達経路を欠損させると、暗所での黄化成長が抑制され、重度の矮小化やストレス耐性の低下などが見られることから、BR は植物の成長と発達の制御において中心的な役割を担っている。BR の情報伝達を司る鍵転写因子は BZR ファ
ミリー転写因子の BIL1/BZR1 であり、BR 応答遺伝子を正または負に制御する。我々は BIL1/BZR1と標的 DNA の複合体構造を解明し、BZR ファミリー転写因子に特有の二量体形成と DNA 認識機
構を明らかにした。BIL1/BZR1 の DNA 結合ドメインは bHLH ファミリー転写因子と同じ DNA 認
識ヘリックスと塩基認識残基をもち、G-box 配列（CACGTG）に結合する。一方、BIL1/BZR1 は特有の β ヘアピン構造を用いて bHLH ファミリー転写因子とは異なる二量体形成様式をとり、その結果として DNA 認識ヘリックス間の傾きが約 20º 広がることにより、G-box 配列の 5’側の CAと塩基認識残基との相互作用が弱まる。これは BIL1/BZR1 の配列認識が bHLH ファミリー転写因子よりも緩いことを示唆するが、実際には BIL1/BZR1 が制御する遺伝子は限定的である。そこ
で我々は、BR 及び BIL1/BZR1 依存的な遺伝子発現解析と DAP-seq データの比較解析を行い、抑制される遺伝子のプロモーターには BIL1/BZR1 が強く結合する nnCGTG 配列（nn が CA の場合には G-box 配列）が存在し、この配列への結合能が配列の両側に隣接する 2 塩基の影響を強く受けることを見出した。さらに X 線結晶構造解析と変異体解析により、BIL1/BZR1 の隣接塩基に対する結合選択性は、BIL1/BZR1 に特有の DNA 主鎖リン酸基との相互作用を介した DNA の形状認識が基盤であることが示唆された。BR は環境ストレスや病害虫への応答なども広く制御することから、遺伝子の BR 応答性の調節に関する本研究の知見は、BR 情報伝達の選択的制御による有用植物の創出へと応用が期待される。
本講演では、以上の BR 情報伝達の転写制御機構に関する我々の研究紹介に加え、従来の試験管内で再構成された生体分子の解析に留まらず、細胞・組織・個体といった多階層にわたる高分
解能分子イメージングへの構造生物学の展望について議論したい。

─ 28 ─

A-3
植物細胞生物学を起点とした画像の定量評価と機械学習
Quantitative evaluation and machine learning of bioimages based on plant cell biology○檜垣匠 1
1

熊本大 国際先端科学技術研究機構○Takumi Higaki 1

1

International Research Organization for Advanced Science and Technology, Kumamoto University

細胞生物学分野において顕微鏡画像の評価は基本的かつ重要な研究手段である．これまでの顕微鏡画像の評価においては研究者の目視に基づく定性的な解釈に留まることが一般的であった．
しかし，このような従来法は客観性に欠けるだけでなく，評価すべき画像の枚数が増えれば増えるほど人的コストも膨大になるという問題点があった．我々はこれらの問題を解決すべく，植物
細胞生物学分野の研究現場の立場から，画像解析と機械学習の技術を活用して，細胞の特徴を定量評価・分類するシステムの開発に取り組んできた．
例えば，気孔開閉運動における細胞骨格構造の多面的な構造変化を捉えるために，配向，束化，密度を定量評価する数値指標（特徴量）を画像解析によって計測し，これら 3 種の特徴量の計測値に基づいた画像クラスタリングを行うことで，新奇の細胞骨格動態を見出した．細胞生物学研究の現場においては，多量の顕微鏡画像データが存在していても，その中に含まれる生物学的知
見を十分に抽出できていない場合も多い．この状況を打破するために，主要な構造特徴を表す画
像特徴量を計測して，その計測値に基づく教師なし学習によって特徴的な集団を見出す研究アプ
ローチは有用と考えられる．
一方，既知のグループを画像計測によって再現性良く自動的に分類したいというニーズも多い．
しかし，一般的には高精度な画像分類を達成するためには，専門家が画像特徴量を入念に検討して分類に適したものを選抜する必要がある．当然ながら，正確な分類に適う画像特徴量セットの構築には多大な労力を要する．しかし，仮に顕微鏡の種類や分類項目が変更されてしまうと全く使いものにならなくなるという場合も多い．また，分類の手本となる情報を専門家が多量に示す必要もあるが，やはり画像の性質や分類目的が変われば改めて情報を付し直す必要がある．このように従来の教師つき学習の枠組みで作成された画像分類ソフトウェアには，開発コストが高い
割には汎用性が低いという問題点があった．特に基礎生物学研究の現場においては同じ撮像機器のみを用いて同じ材料のみを延々と撮影し続けるという実験系が組まれることはむしろ稀で，コストベネフィットの観点から画像分類の自動化は遅々として進まない状況であった．このような問題を克服すべく，我々は Clustering-Aided Rapid Training Agent（CARTA）と名付けた画像解析フレームワークを開発した．CARTA は，開発コストを劇的に抑えつつも高精度かつ多目的な分類を
他種多様な画像で実現することが可能とする．例えば，蛍光顕微鏡による細胞周期判定，明視野
顕微鏡画像による気孔開閉状態の判別，電子顕微鏡画像による色素体変異体の分類，核磁気共鳴
画像によるがん種の判別，など多種多様な分類が高精度に実現された．さらに本手法を応用して，広域の顕微鏡画像から任意の細胞内構造を検索するシステムも提案した．本発表ではこれらの技術を概説するとともに，今後の研究展開についても議論したい．

─ 29 ─

A-4
バイオイメージング研究の展開と本学会の取り組み〜次の 30 年のさらなる飛躍に向けて〜○岡浩太郎 11慶應義塾大学 理工学部

バイオイメージング学会が活動を始めてはや 30 年。今年 30 年記念の年会を開くことができたのは、大きな喜びです。私がイメージング研究を始めたきっかけは著名な理論物理学者シュレーディンガー（Erwin Schrödinger）の有名な本にあります。1943 年に出版された"What is Life?” （生命とは何か）のイントロには、” How can the events in space and time which take place within the spatial
boundary of a living organism be accounted for by physics and chemistry?” と書かれていて、「生命現象
は時空間的なパターンである」ということを明確に述べています。時間空間的なパターンを調べるのであればイメージングは最強のツールです。この本が、私の「生命現象をイメージングで調べる研究」の動機付となっています。
さて私の研究室では様々な神経活動や発生過程における細胞動態を主に蛍光イメージングを利用して可視化・解析することを進めてきました。これまでに細胞内で情報伝達を担っているカル
シウムやマグネシウムイオン、サイクリックヌクレオチド類、そのシグナル下流の様々な酵素群のリン酸化、細胞内のエネルギー代謝を担うアデノシン三リン酸（ATP）、乳酸、ピルビン酸、など「もの」の変化を調べてきました。一方で細胞骨格の動態、神経細胞やミトコンドリアの膜電位、さらには細胞の温度などの「こと」についても調べる機会が増えてきています。これらの研究では、蛍光色素と蛍光タンパク質を様々に変えることで、例えばミトコンドリア膜電位、細胞内マグネシウムイオン、ATP など複数の細胞内シグナルを同時に取得することもできるようになりました。それら複数シグナルの相関を解析し、細胞内シグナルの「絡み」を調べています。
リアルタイムに変わる生命現象をイメージングで調べる研究をこれまで進めてきて満足しているかというと然にあらず。ここまで研究を続けてきて、イメージング研究の難しさを一層感じ不満だらけです。どんなに頑張っても今までのアプローチでは細胞内の全ての「もの」や「こと」を調べることはできないでしょう。
「調べる方法がたまたまあるからそれを調べている」と言われても反論できません。一方であらゆる「もの」と「こと」を調べる方法が将来できたとしても、
時事刻々変わる多種類のデータを読み解いて、それらの複雑な「絡み」を調べる方法がありません。単に相関を調べるだけでなく、因果を決める方法や、ビッグデータ解析など、他の分野で開発された手法を取り入れてゆくことが大切だと思います。
本講演ではバイオイメージング研究について感じている私見を、これまでの研究経験からお話をさせてもらいますとともに、次の 30 年の課題について皆さんと議論できたらと思っています。

─ 30 ─

奨励賞受賞講演１
超音波とマイクロバブルを用いたイメージング・治療システムの開発
Development of imaging and therapeutic system using ultrasound and microbubbles○小俣 大樹帝京大学 薬学部 薬物送達学研究室○Daiki Omata
Laboratory of Drug and Gene Delivery Research, Faculty of Pharma-Science, Teikyo University
 コンピュータ断層撮影、磁気共鳴画像、陽電子放出断層撮影、術中蛍光診断や超音波造影は、臨床における適切な診断に欠かせないイメージング技術である。なかでも、超音波は安全性が高く長年にわたり診断に用いられてきた。近年では、超音波造影剤 (マイクロバブル) を組み合わせた血流イメージングなどを用いて、より精度の高い超音波診断が行われている。さらに、超音波とマイクロバブルの治療への応用が期待され、活発に研究が進められている。しかしながら、診断や治療において重要な役割を果たすマイクロバブルの開発は十分に進められていない。正確な診断や高い治療効果を得るためには、マイクロバブルが体内で安定に存在し、血中を循環することが重要となる。マイクロバブルは、難溶性気体をタンパク質や脂質などで覆うことで、気体の溶出を抑え安定化されている。そこで、演者は診断治療に適した安定性の高いマイクロバブルの開発に向けて、外殻成分の最適化を行った。超音波イメージングを用いて、マイクロバブルの超音波造影剤としての機能を評価し、高い安定性、血中滞留性を示すマイクロバブルの開発に成功した (J. Liposome Res., 2019, Int. J. Pharm., 2020, PCTJP2016002810)。
超音波照射によってマイクロバブルの振動や圧壊現象が誘導される。この現象を血管内で誘導すると、超音波照射部位に薬物や遺伝子を効率よく送達可能になる。そこで、新規マイクロバブ
ルと超音波を使用した薬物送達システムの開発を行った。まず、超音波イメージングの利点であるリアルタイムでの観察に着目し、リアルタイムでの超音波イメージング下で、目的の臓器へのプラスミド DNA を導入する遺伝子導入法の構築を行った (J. Drug Target., in press)。さらに、血液脳関門の存在により薬物移行が困難である脳を標的として、マイクロバブルと経頭蓋超音波照射を用いた薬物送達法の開発を試みた。低侵襲的な脳内薬物送達に適した超音波照射条件やマイク
ロバブルの物性を見出し、脳内へ送達可能な物質の分子量については共焦点レーザー顕微鏡、invivo 蛍光・発光イメージングシステムを用いて明らかにした (J. Control. Release, 2019, J. Pharm.
Sci., 2020)。また、本システムを用いた抗がん剤デリバリーによる脳腫瘍モデル動物に対する治療効果の増強を確認した。
本講演では、イメージング手法を活用した新規マイクロバブルの開発および超音波イメージン
グと治療への展開に関する研究成果を紹介する。
謝辞：本研究の遂行にあたり、終始ご指導いただきました帝京大学 薬学部 薬物送達学研究室
鈴木 亮 教授をはじめ、帝京大学 薬学部 セラノスティクス学講座 丸山一雄 特任教授、研究室のスタッフ、卒業生、大学院生、共同研究者の先生方に心より感謝申し上げます。

─ 31 ─

奨励賞受賞講演２
蛍光ゆらぎ解析による細胞およびソフトマター内分子動態解析
Fluorescence fluctuation analysis in cells and soft matters○山本条太郎 1
1

産総研, 健康医工学研究部門, バイオイメージング研究グループ○Johtaro Yamamoto 1
1

Bioimaging research group, Health and Medical Research Institute, AIST

蛍光強度のゆらぎ信号の解析により蛍光分子の動態計測を行う方法として、蛍光相関分光法（Fluorescence Correlation Spectroscopy, FCS）がある。FCS では、試料中に回折限界程度まで励起光を集光した微小領域（0.2 fL 程度）を測定領域とする。蛍光分子あるいは蛍光標識した標的分子は、ランダムな並進拡散（ブラウン運動）によって測定領域を出入りするため、検出される蛍光強度は時間的にゆらぐ。この蛍光強度信号のゆらぎは並進拡散の速さ（拡散係数）を反映する
ため、結果として標的分子の流体力学的半径や粘度の情報が得られる。また同時に、平均蛍光強度と蛍光強度信号の振れ幅から、標的分子の数（濃度）を求めることが可能である。
多くの場合、FCS では上述のような並進拡散運動による蛍光強度信号のゆらぎの解析を行うが、検出される蛍光強度ゆらぎは並進拡散以外の原因によっても生じ得る。例えば、励起された蛍光分子が一時的に蛍光を発しない励起三重項状態等の暗状態へ遷移したり、標的分子の構造変化や分子間相互作用によって消光や蛍光共鳴エネルギー移動が断続的に起きたり、あるいはピコ～ナ
ノ秒程度の時間スケールでは、蛍光分子は励起と脱励起を繰り返し明滅している。また励起光と蛍光を直線偏光とする光学系を用いると、分子がランダムに回転（回転拡散）することによっても蛍光強度信号は揺らぐ。このような蛍光強度ゆらぎに対して適切なモデルを立てることで、FCS
では分子動態だけにとどまらない様々な測定を実現できる。
蛍光ゆらぎ信号を取得する方法も共焦点蛍光検出系による 1 点計測だけにとどまらない。多点同時集光や全反射照明、ライトシート照明による同時多点測定によって分子動態のマッピング解析を行う試みも多くなされている。また、レーザー走査型顕微鏡（LSM）により得られた画像やそのスタックを解析することによって、分子動態や濃度、分子間相互作用、多量体形成のマッピ
ング解析を行う手法もいくつか提案されている。
発表者はこれまで、ホログラフィ技術を導入した多点 FCS、分子の回転拡散を測定できる偏光
FCS、ピンホール調整が不要になった光ファイバ型 FCS 等の装置や、LSM 画像の解析に基づいたラスター画像相関分光法（RICS）や Number and Brightness analysis（N&B）の関連技術の開発を行ってきた。最近では、偏光 FCS を用いることで、細胞やゲル等のソフトマター内での蛍光分子の回転拡散と並進拡散を測定し、これによって高分子混雑の状態を評価できる可能性を見出した。
発表では、発表者が開発してきたいくつかの装置やそれらによって得られた知見についてご紹介する。

─ 32 ─S1-1
CUBIC-HistoVIsion：臓器・全身をカバーする 3 次元組織学技術
CUBIC-HistoVIsion realizes whole-organ/body three-dimensional histology○洲崎悦生 1, 2
1

順天堂大・院医 生化学・生体システム医科学、2 理研 BDR 合成生物学研究 T○Etsuo A. Susaki1, 2
1

Dept. Biochem & Systems Biomed., Juntendo Univ. Grad. Sch. Med.
2

Laboratory for Synthetic Biol. RIKEN BDR

近年のさまざまな組織透明化および 3 次元イメージング法の発展により、細胞解像度以上で臓器や全身を包括的に観察することが可能となった。本講演では、我々が開発するセルオミクスフレームワーク「CUBIC」[1-2]をベースにした、全臓器染色およびイメージングのための最新の手法を紹介する [3]。大型組織サンプルの 3 次元染色は、染色プローブの適切な浸透の困難さから、組織学の長い歴史の中でもなかなか実現されてこなかった。我々は 3 次元染色系の複雑な物理化学的環境を明らかにするために、最初に電解質ゲルとしての生体組織の正確な特性評価を実施した。
次に、単純化された組織模倣人工電解質ゲルを使用して、様々な 3 次元染色条件を実験的に評価し た 。 こ れ ら の 必 須 条 件 の 組 み 合 わ せ に よ り 、 我 々 は 高 効 率 な 3D 染 色 プ ロ ト コ ル「CUBIC-HistoVIsion」をボトムアップに設計することに成功した。CUBIC-HistoVIsion は、成体
マウスの全脳、生体マーモセット半球、成人の死後小脳の約 1 cm3 の組織ブロック、および乳児のマーモセット全身を均一に標識できた。我々は CUBIC-HistoVIsion によるマウス全脳の血管染色に成功し、疾患や老化に関連すると考えられる局所血管異常の探索を開始している。CUBIC お
よび CUBIC-HistoVIsion は、多細胞系の臓器および全身スケールの組織学的分析を行うための高度な技術基盤として機能する。
参考文献:
1. Susaki et al. Cell 157: 726-739 (2014)
2. Susaki et al. Nature Protocols 10: 1709-1727 (2015)
3. Susaki et al. Nature Communications 11: 1982 (2020)─ 33 ─

S1-2
自動球面収差補正による生体組織の屈折率推定
Refractive indexes estimation of living tissues
using automated spherical aberration correction○毛内 拡 1
1

お茶大・理○Hiromu Monai 1
1

Department of Biology, Faculty of Science, Ochanomizu University

An objective lens with a larger numerical aperture (NA) enables us to acquire higher resolution images.
Such high NA objectives, however, can induce the well-known optical error, spherical aberration. This typeof aberration is due to the mismatching of refractive indexes (RIs) between immersion media, a cover glass,and thick samples like biological tissue. Aberrated images look vertically elongated, which results inmaking observe fine structures blurred on the focal plane. High NA objectives usually equip rotating
mechanics, the correction collar to compensate for the spherical aberrations by adjusting the inner optical
path. The correction collar has been designed to adjust the thinner samples, like a sliced brain tissue justunder the cover slip, for example, a standard water immersion lens shows the best resolution with a sample
that approximate to have a refractive index of 1.33, and a cover glass that has a thickness of 0.17
millimeters. On the other hand, in the thick biological tissue, however, it is almost impossible to manuallyfind the optimum position because there is no quantitative index of the correction collar's optimum position.
To solve this issue, we have developed the fully automated spherical aberration correction system,
TruResolution (Olympus, Japan), which has a motorized collection collar, and an algorithm to calculate thebest adjustment based on the contrast of taken images. Taking advantage of TruResolution, in this study, we
further developed a method for RIs estimation of biological tissues. RIs of the samples can be inversely
estimated from a gradient between the optimum correction collar position at the two different focal planes.
We verified that the RIs of the RI-known samples were correctly estimated, and we tried to estimate RIs of
the transparent brain and living brains. Using this method, it is expected to be able to estimate the RIs of
any biological tissues in a non-invasive manner.

─ 34 ─

S1-3
High-speed volumetric imaging of brain
Shi-Wei Chu1,2,3
1

Department of Physics, National Taiwan University, 1, Sec 4, Roosevelt Rd., Taipei 10617, Taiwan

2

Molecular Imaging Center, National Taiwan University, 1, Sec 4, Roosevelt Rd., Taipei 10617, Taiwan

3

Brain Research Center, National Tsing Hua University, 101, Sec 2, Guangfu Road, Hsinchu 30013, Taiwan

Understanding how the brain functions is one of the grand challenges in modern scientific research. Similar
to a computer, a functional brain is composed of hardware and software. The major bottleneck lies in the
difficulty to directly observe the brain “software”, i.e. the rule and operating information used by the brain,that might emerge from pan-neuron/synapse connectome. A recognized strategy for probing functional
connectome is to perform volumetric imaging in brains with high spatiotemporal resolution and deep brain
penetration. The underlying bottleneck, in my perspective, is that brain is composed of thousands tomillions of densely interconnected neurons, spanning millimeter to centimeter with continuous spiking
activities, and no suitable tool is able to study neural connections and activities in vivo with 3D subcellular
resolution in any location of a living brain. The challenges include not only penetration depth but also
imaging speed of neural networks.
For thick-tissue cellular observation in neuroscience, two-photon microscopy (2PM) has becomea mainstream imaging technique. Here we report our recent progresses in enhancing volumetric imaging
speed of 2PM [1], with a model animal Drosophila, which offers a small brain with sophisticated function
and genetic control capabilities. By incorporating optogenetic stimulation tools and an independent opticalstimulation path, we demonstrated all-optical physiology in the visual pathway of Drosophila [2].
Furthermore, to allow volume imaging deep inside a mammal brain, which is typically centimeter in scale,we develop two-photon volumetric endoscopy [3] by integrating two gradient index lenses, allowing invivo imaging of neural circuits in centimeter-depth brain regions with high-contrast and sub-second volumerate. If time allows, I would like to introduce our very recent results on upgrading the volumetric speed tobe larger than 500-volumes/second over 107 µm3 size, via combination of 32-beam parallel lateral-scanning,a ~100-kHz axial-scanning acoustic lens, and a 32-channel photodetector, enabling data rate above 10 GHz.
[1] K.-J. Hsu et al., Opt. Lett. 44, 3190 (2019).
[2] C. Huang et al., iScience 22, 133 (2019).
[3] Y.-F. Chien, et al., Biomed. Opt. Exp. 12, 162 (2021).

E-mail address：swchu@phys.ntu.edu.tw

─ 35 ─

S2-1
ミトコンドリア構造の動的制御とその生理的意義
觀音裕考 1、Pal Soumyadip 1、丸山翔太 1、石原孝也 1、○石原直忠 11

大阪大・院 理・生物科学

ミトコンドリアは 2 重膜構造からなる細胞内オルガネラであり、酸素呼吸によるエネルギー生
産のみならず、リン脂質・ステロイドホルモン・ヘム等の様々な物質の合成と代謝、また酸化ス
トレス・アポトーシスやカルシウム制御等の細胞応答などの多彩な機能を持っている。ミトコン
ドリアの機能低下は神経変性疾患・心機能不全・代謝疾患等の様々な病態で観察され、幅広い研
究領域においてミトコンドリアの研究が進められている。これらの病態において、しばしばミトコンドリアの形態変化が見出されるが、その病態における意義はまだ多くは理解されないまま残されている。
哺乳動物細胞の生細胞観察を行うと、ミトコンドリアは細胞内で移動しまた融合と分裂を活発に繰り返しながら形態を変化させる様子を観察することができる。このミトコンドリアの融合と分裂によるダイナミックな構造制御には局在の異なる GTPase タンパク質群（外膜融合：Mfn1,
Mfn2、内膜融合：OPA1、分裂：Drp1）が重要な機能を担っている。私達の研究グループはミトコ
ンドリアの形態とその動的特性に着目し、GTPase 群の分子機構の詳細とその制御に関する研究を進めている。また関連因子を培養細胞およびマウスで抑制・欠損させ、細胞応答や分化、また個体内での発生・病態・老化等における意義の解析を進めている。
ミトコンドリアは内部に自身の DNA（mtDNA）を保持している。mtDNA への変異の導入および蓄積はミトコンドリア機能低下、さらにはミトコンドリア病の原因となることが知られている。
私達は近年、ミトコンドリアの融合と分裂を介した 2 重膜のダイナミクスが、mtDNA の分布・配置に重要な役割を持つこと、またこの現象がミトコンドリアの機能制御に関与することを見出している。mtDNA の細胞内分布の制御に関わる分子の同定を進めることで、様々な細胞応答経路がミトコンドリア機能制御に関与することを見出しつつある。このようにミトコンドリアのダイナ
ミックな特性に着目することで、新視点からのミトコンドリア制御機構の解明を目指して研究を進めている。

─ 36 ─

S2-2
イメージングで見つかったミトコンドリアの細胞保護機能
Mitochondrial self-preservation mechanism found with bioimaging○太田善浩 、アクリマ・ヤンナトゥル
1

東京農工大・院・生命工学専攻○Yoshihiro Ohta 1, Aklima Jannatul 1, 2
Department of Life Science and biotechnology, Tokyo University of Agriculture and Technology
ミトコンドリアは、細胞の活動に必要なエネルギーを作ると同時に、過剰に存在すると有害な活性酸素種を発生させる細胞内器官である。多くの疾病で、細胞内で活性酸素種が過剰に発生した状態（酸化ストレス）が観察されており、ミトコンドリアにおける活性酸素種発生の適切な抑制は極めて大切だと考えられ、研究されてきた。現在までに、発生した活性酸素種を除去する仕組
みは見つかっているが、発生を抑制する仕組みはよくわかっていない。
ミトコンドリアは内膜を挟んだプロトン駆動力により ATP を合成している。プロトン駆動力の成分である膜電位を観察すると、一定ではなく図 1 のように変動することが、植物から哺乳類まで広範囲な生物で認められる。しかし、そのメカニズムや、細胞への影響をは不明であった。本
研究では、ミトコンドリアで自発的に生じる一時的な膜電位の消失が、どのように起こるのか、
ミトコンドリアにどのような影響をもたらすのかを、イメージングの技法を用いて調べた結果を報告する。
最初に、細胞からミトコンドリアを単離し、ミトコンドリア周囲の環境を操作してミトコンド
リアが自発的な膜電位変動を起こしやすい条件を調べ、細胞内で変動を起こしやすい条件と比較した。その結果、ミトコンドリア内部のｐH が高い時に、一時的な膜電位の消失の頻度が増加し、また、活性酸素種の発生量が増えることが分かった。加えて、一時的な膜電位変動を止めると、ミトコンドリア内部のｐH 上昇し、活性酸素種の発生量が増加した。このことから、一時的な膜電位変動は、活性酸素種の発生を抑制するメカニズムであるとみなすことができる。シンポジウ
ムでは、詳細を説明したい。

図１ 細胞内ミトコンドリアの状態変化
白く見えているのがミトコンドリア。時刻６秒で急激な水素イオンの流入が起き。４２秒で水素イオン移動のバランスが戻っている。

─ 37 ─

S2-3
ミトコンドリア機能を操作する Drug Delivery System
Drug delivery system to control mitochondrial function○山田勇磨 1、原島秀吉 1
1

北大院 薬

○Yuma Yamada 1, Hideyoshi Harashima 1
1

Faculty of Pharmaceutical Sciences, Hokkaido University

多彩な機能を有するミトコンドリアは様々な分野から注目されており、疾患治療、美容・健康の維持、ライ
フサイエンスの発展に大きく貢献するオルガネラとして脚光を浴びている。そのため、ミトコンドリアへ目的分子を送達する Drug Delivery System (DDS)は、様々な分野の研究に大きく貢献すると期待されている。
これまでに、ミトコンドリアを標的とした Drug Delivery System (DDS)がいくつか報告されてきたが、送達分子の物性やサイズを制限するため、タンパク質や核酸などの高次構造分子のミトコンドリアへの送達は困難であった [1]。我々は、ミトコンドリアが細胞内で活発に融合・分裂を繰り返し、相互に生体分子（核酸、タンパク質、など）を共有している点に着目し、ミトコンドリアと膜融合可能なナノカプセル型 DDS・
MITO-Porter を考案した。本戦略は、「膜融合を介して内封分子をミトコンドリアへ送達する」ため、送達分
子の物性やサイズを制限しない。ミトコンドリアと融合性の高い脂質膜組成の探索を行い、100 種以上の組成の中からミトコンドリア高融合性リポソーム (MITO-Porter)を同定する事に成功した [2]。これまでに、
タンパク質、核酸、超分子、難水溶性分子などの様々な分子を MITO-Porter に内封し、培養細胞ミトコン
ドリアへの分子送達に成功している [1]。
現在は、MITO-Porter の開発研究で培ったミトコンドリア分子送達技術を基盤とし、異分野研究者・臨床家とともに『病態モデルにおける治療効果の検証』を中心とした共同研究を展開している。本講演では、「ミトコンドリアを標的とした癌治療戦略」[3]、「虚血性疾患に対するミトコンドリア治療戦略」について紹介する。また、ミトコンドリア病患者細胞を対象とし、独自に設計した治療用核酸・遺伝子をミトコンドリア送達
し、治療効果を評価する自主臨床研究を精力的に進めている。その成果として、『変異ミトコンドリアを標的とした治療用核酸送達療法』の研究を進め、治療用 RNA を MITO-Porter システムを用いて送達する事により、ミトコンドリア病患者細胞の RNA 変異率を低下させ、ミトコンドリア呼吸能を回復させる事に成功した。これまでに tRNA [4]、mRNA [5]、rRNA [6]に本戦略が適用可能である事を報告しており、本講演ではこれらの成果をミトコンドリアを標的とした遺伝子機能制御の実施例として紹介したい。
本講演では、我々の研究成果を中心にミトコンドリア DDS を概説するとともに、ミトコンドリア DDS が『バイオイメージング研究』にどのように貢献できるのかも含め議論したい。
[1]

Yamada Y. et al, Adv. Drug Deliv. Rev. 154-155: 187-209 (2020).

[2]

Yamada Y. et al, Biochim. Biophys. Acta 1778: 423-432 (2008).

[3]

Satrialdi et al, Chem. Commun. 56: 1145-1148 (2020).

[4]

Kawamura E. et al, Mol. Ther. Nucleic Acids 20: 687-698 (2020).

[5]

Yamada Y. et al, Sci. Rep. 10: 7511 (2020).

[6]

Yamada Y. et al, Mitochondrion 55: 134-144 (2020).

─ 38 ─

S3-1
走査電子顕微鏡の生物応用
Application of scanning electron microscopy in biology○甲賀 大輔旭川医大 医 顕微解剖
○Daisuke Koga
Department of Microscopic Anatomy and Cell Biology, Asahikawa Medical University【はじめに】
生物学分野における走査電子顕微鏡(SEM)は、これまで組織・細胞表面の立体(3D)形状解析に広く利用されてきたが、近年の装置開発に伴い、その応用が大きく変わってきている。そこで本講
演では、「SEM の生物応用」について、私たちと関係が深い技法を中心に紹介する。
【SEM の信号】
SEM は電子銃から発生する電子線を試料に当て、そこから発生する様々な信号(二次電子(secondary electron; SE)や反射電子(backscattered electron; BSE)、陰極蛍光(cathodoluminescence; CL)、X 線など)を検出することで、試料表面の 3D 形状や組成像をイメージすることができる。生物学分野では、主に SE と BSE の 2 つの信号を用いている。
【SE 信号を用いた試料作製法】
SE の特徴は、試料の突起部分やエッジ部分からより強い信号が得られるため(エッジ効果・傾斜角効果)、一枚の画から立体感のある像を取得できることである(試料の表面 3D 構造解析には、SE の信号を用いる)。SE 信号を使った SEM 試料観察法の特徴は、「みえないものをみえるようにする」であり、透過電子顕微鏡(TEM)に比べると多様で、目的に応じて工夫を凝らす必要がある
点が面白い。ここでは、特殊試料作製法として、細胞内微細構造観察法(オスミウム浸軟法)について紹介する。
【BSE 信号を用いた試料作製法】
BSE モードでは、試料を構成する平均原子番号に依存したコントラスト像(組成コントラスト)を取得することができる。つまり、細胞の固定や染色に用いるオスミウムやウラン、鉛などの重金属からは、強いコントラスト(明るく観察される)が得られ、試料の組成像がコントラストに反映される。近年の装置開発に伴い、樹脂に包埋した組織ブロック面の観察(ブロックフェイスイメー
ジング)や樹脂包埋組織切片の観察(セクションフェイスイメージング)が可能となり、これらの技術が最新の 3D-SEM 技術(FIB-SEM、SBF-SEM、 連続切片 SEM 法)の基盤となっている。ここでは、私たちと関りが深い「連続切片 SEM 法」を中心に紹介したいと思う。
【おわりに】
近年、SEM の生物応用は主に BSE 信号を利用した 3D-SEM 法が主流となりつつあるが、SE 信号を利用した様々な技法も、私たちに貴重な情報を与えてくれることを忘れてはならない。今後
も、SEM のバイオ領域における可能性を追求していきたいと考えている。

─ 39 ─

S3-2
アポダイズド位相差顕微鏡による無染色・非侵襲での細胞内微細構造動態の観察
Observation of the dynamics of subcellular structures in living unstained cells by
apodized phase-contrast microscopy○島﨑健太朗 1、加藤薫 2、中村優子 1、齊藤恭子 1、深澤征義 1、花田賢太郎 1,3
1

感染研・細胞化学、2 産総研・バイオメディカル、3 感染研・品管○Kentaro Shimasaki 1, Kaoru Katoh 2, Yuko Nakamura 1, Kyoko Saito 1,
Masayoshi Fukasawa 1, Kentaro Hanada 1,3
1

Department of Biochemistry and Cell Biology, NIID
2

Biomedical Research Institute, AIST

3 Department of Quality Assurance and Radiological Protection, NIID

アポダイズド位相差法は、位相差に特有のハロ（細胞などの周囲が白く光る光学ノイズ）を減弱し、微細な構造を可視化する位相差法である。原理の開発から  年あまり経過した現在、アポダ
イズド位相差の設計自体は同じだが、カメラの高感度化や顕微鏡本体、並びに対物レンズの光学
精度の向上に伴い、画質の改善が顕著である。国立感染症研究所に新たに導入された、最新の機器を用いたアポダイズド位相差顕微鏡システムによるライブセルイメージングを実施したところ、大小様々な顆粒構造や糸状構造体などの微細な構造体が細胞内を動く様子が、無染色・非侵襲で観察できた。観察された構造体がどのオルガネラに相当するのかを検証するため、蛍光オルガネ
ラマーカーを導入した細胞を複数樹立し観察したところ、いくつかのオルガネラはコントラストの強度や分布にユニークな特徴を有していることが明らかとなった。今回の発表では、位相差＋蛍光のライブセルイメージング観察例をいくつか紹介したい。また我々は、病原体感染に伴う細胞内動態変化を検出・観察する手段としての当該顕微鏡の有用性にも着目している。そこでまず、複製複合体（Replication Complex: RC）を形成することが知られるプラス鎖 RNA ウイルスをモデルとした感染細胞の観察に着手している。本発表においては、日本脳炎ウイルスを感染させた細胞における RC や、ウイルスタンパク質の局在をアポダイズド位相差顕微鏡で観察したデータについても紹介し、感染症研究への発展応用の可能性について言及したい。


─ 40 ─

S3-3
有機合成小分子を用いた超解像光学顕微鏡による生体試料の観察
Live cell super-resolution imaging using organic small molecules○佐藤良勝 1, 2
1

名古屋大 WPI-ITbM、2 名古屋大・院 理学研究科○Yoshikatsu Sato1, 2
12Institute of Transformative Bio-molecules

Graduate School of Science, Nagoya University

光の回折限界を超える超解像顕微鏡の登場により、蛍光イメージングの需要はますます大きくなっている。このようなハードウェアの発展とともに開発が進められているのが蛍光色素である。
蛍光タンパク質と有機合成小分子は並び立つ分子ツールであり、それぞれに優れた特性がある。
本発表では、その場ですぐに核やミトコンドリア DNA をラベルできる有機合成小分子として最近我々が報告した DNA 染色色素(Kakshine)の分子構造やその特徴、適用範囲などを中心に、私が所属する名古屋大学トランスフォーマティブ生命分子研究所で得られた最近の研究成果を報告する。

─ 41 ─

S3-4
機械学習によって明視野細胞画像から遺伝子型の違いを判別できるか
Machine learning approach for discrimination of genotypes based on bright-fieldcellular images
鈴木吾大 2, 齋藤裕 1,3,4, 〇光山統泰 1
1

産業技術総合研究所 人工知能研究センター, 2 一般財団法人シネコカルチャー, 3 産総研・早大 生体システムビッグデータ解析 オープンイノベーションラボラトリ, 4 東京大学大学院新領域創成科学研究科
Godai Suzuki2, Yutaka Saito1,3,4,〇Toutai Mitsuyama1
1

Artificial Intelligence Research Center, AIST, 2Synecoculture Association. 3AIST-Waseda University

Computational Bio Big-Data Open Innovation Laboratory. 4Graduate School of Frontier Sciences, The
University of Tokyo.
 Morphological profiling is a combination of established optical microscopes and cutting-edge machine
vision technologies, which stacks up successful applications in high-throughput phenotyping. One major
question is how much information can be extracted from an image to identify genetic differences between
cells. While fluorescent microscopy images of specific organelles have been broadly used for single-cell
profiling, the potential ability of bright-field (BF) microscopy images of label-free cells remains to be test
ed. Here, we examine whether single-gene perturbation can be discriminated based on BF images oflabel-free cells using a machine learning approach. We acquired hundreds of BF images of single-genemutant cells, quantified single-cell profiles consisting of texture features of cellular regions, andconstructed a machine learning model to discriminate mutant cells from wild-type cells. Interestingly, themutants were successfully discriminated from the wildtype (area under the receiver operating characteristic
curve (AUC) = 0.773). The features that contributed to the discrimination were identified, and they
included those related to the morphology of structures that appeared within cellular regions. Furthermore,functionally close gene pairs showed similar feature profiles of the mutant cells. Our study reveals thatsingle-gene mutant cells can be discriminated from wild-type cells based on BF images, suggesting thepotential as a useful tool for mutant cell profiling.

─ 42 ─

S3-5
新規プローブの開発と応用による低分子量生体分子の可視化解析
Imaging analyses of low molecular weight bioactive molecules by the development andapplication of novel probes○塗谷睦生 1, 2, 3
1

慶應義塾大 医学部、2 横浜国大 環境情報、3JST さきがけ
○Mutsuo Nuriya 1, 2, 3

1 Keio University School of Medicine, 2 Graduate School of Environment and Information Sciences,

Yokohama National University, 3 JST PRESTO
生命現象の理解においては、見て理解する、可視化が非常に強力な手段であり、この可視化研究においては蛍光イメージングが非常に有効である。蛍光タンパク質の発見と展開、そして様々な蛍光色素の開発により、これらを対象となる生体分子にタグとして付け、可視化することが可能となり、生命科学研究の発展に大きな寄与をしている。しかし、実際には、今もなおまだ見えていない分子が多々存在する。その多くは、生命現象に非常に重要な役割を果たす、低分子量の分子群である。この中には、塩基、アミノ酸、糖などの生体高分子の構成要素や代謝関連物質などが含まれ、また神経系では神経伝達物質の多くが分子量が 1,000 にも満たない低分子量のものである。ここで、蛍光タンパク質はその数十倍の分子量を持ち、比較的小さいと思われる蛍光色
素でも分子量が 1,000 程度ある。このように大きな蛍光分子を低分子量生理活性物質に付加すると、化学的性質、そしてそれによる生物学的性質が大きく変化してしまい、よってプローブとして適さない。このような蛍光タグ法の適用の限界が、低分子量生理活性物質の可視化、そしてそれによる理解を阻んできた。この状況を打開するためには、新たな可視化法の開発が必要不可欠である。
この問題を解決するため、我々は近年、アルキンタグ法の応用を進めている。炭素 2 原子の三重結合を持つアルキンは、生体中には存在しないため特異的なタグとなる。そして分子量が 25 程
度と非常に小さく、その付加による対象分子への影響を最小限に止めることができる。更に、アルキンは、アジドと特異的な環化反応をすることから、アジド付加蛍光色素などによるその後の検出ができ、また、ラマン散乱による検出も可能である。これらのことを鑑み、我々は、低分子量神経調節物質のアルキンタグ・プローブの開発と応用を進めている。本講演では、その最初の応用例であるアルキンタグ・ドーパミンの開発と応用の例を紹介する。

─ 43 ─

S3-6
高輝度蛍光ナノ粒子を用いた病理解析による乳癌内分泌療法の耐性予測
Prediction of endocrine therapy resistance in breast cancer by immunohistochemistry
using nanoparticles with ultra-high brightness○権田幸祐 1、北村成史 1、石田孝宣 2、多田寛 2
1

東北大・院 医学系 医用物理学分野、2 東北大・院 医学系 乳腺・内分泌外科学分野○Kohsuke Gonda 1, Narufumi Kitamura 1, Takanori Ishida, Hiroshi Tada1, 2
1

Department of Medical Physics, Graduate School of Medicine, Tohoku University

2 Department of Breast and Endocrine Surgical Oncology, Graduate School of Medicine,

Tohoku University
女性ホルモンエストロゲンの受容体であるエストロゲン受容体 α（ERα）は、ヒトの乳がんの発生と成長に重要な役割を果たすことが知られている。
乳がん患者の約 70％が ERα 陽性を示すが、多くの ERα 陽性乳がん患者は、内分泌療法で効果的に治療される。しかし、転移性乳がん患者の大半が、また ERα 陽性乳がん患者の約 40％が内分泌療法に対し耐性を示す。この耐性獲得機序には様々な説が提案されているが、その一つとして細胞核内ではなく核外（細胞膜および細胞質）に存在する ERα によって媒介されるクロストークが関連すると考えられてきた。しかし、核外のERα はその存在量が微量であるため、既存の免疫組織化学法（IHC）では定量的な病理診断が難
しく、細胞膜および細胞質に存在する ERα の評価が内分泌療法の抵抗性を予測できるかどうかは実証されていなかった。我々は、独自開発した高輝度蛍光ナノ粒子（phosphor-integrated dots : PID）
を用いた免疫組織化学法（IHC-PID）を利用してこの課題を解決し、乳がん患者の内分泌療法耐性の予測診断技術の開発を目的として研究を進めた。
ERα の発現量が異なる細胞株を用いて培養細胞ブロックのパラフィン切片を作製し、核に局在する ERα について IHC-PID を行った。
ERα を高発現する細胞株、ERα を中程度に発現する細胞株、ERα の発現が低い細胞株および ERα 陰性細胞株、以上の間で PID の存在粒子数を示す PID スコアが有意に異なることが示された。さらに得られた PID スコアを ERα の mRNA 発現量のリアルタ
イム qRT-PCR 測定および FACS による発現タンパク量の定量解析と比較し、両者が強い相関関係を示すことを確認した。次に、発現ベクターを用いて HeLa 細胞の細胞核内および細胞核外にそれぞれ特異的に ERα-EGFP を発現する細胞を樹立し、PID による局在評価を行ったところ、PIDの輝点が細胞核内および細胞核外でそれぞれ EGFP と共局在することを確認した。これらの結果
から、PID を用いて核の内外の ERα の発現量をそれぞれ評価可能であることが示された。以上の結果をもとに、ERα 陽性/HER2 陰性乳がんの 65 人の患者の組織切片について IHC-PID 試験を行い、ERα 総量、核内 ERα、核外 ERα のそれぞれの PID スコア、および核内 ERα と核外 ERα の比率（ENR）を測定した。その結果、従来の色素（DAB）を用いた IHC による評価方法（Allred ス
コア、H スコア）や、IHC-PID で ERα 総量を測定しただけの方法に比べ、本研究の ENR スコアは
全生存期間の低下（p = 0.048）および無病生存期間（DFS）（p = 0.007）と有意に相関していることが分かった。さらに多変量解析により ENR が DFS の独立した予後予測因子であることが明らかになり、乳がん患者の内分泌療法耐性を予測できることが示された。

─ 44 ─

S4-1
細胞内の水の測定から細胞内夾雑環境・液-液相分離を探る
Investigation of intracellular crowding environments and liquid-liquid phase separation
by measuring water in a cell
○中林孝和
東北大院薬
○Takakazu Nakabayashi
Graduate School of Pharmaceutical Sciences, Tohoku University
近年，タンパク質の濃度が非常に濃い状態 (液滴) と薄い状態の二相が生じる液–液相分離 (LLPS)
が，特に細胞生物学の分野において注目を集めている．温度変化などの外部摂動が細胞に生じたときに，細胞内に過渡的に LLPS が生じることは知られていた．しかし，外部摂動だけではなく，
各種生理現象に対しても LLPS の寄与が相次いで報告され，現在の LLPS 研究の潮流を作っている．
また，この LLPS はタンパク質濃度の不均一な状態が細胞内で生じることを意味しているが，そもそも細胞内は緩衝溶液のような「きれいな」環境とは全く異なる．細胞の中は分子クラウディ
ングと呼ばれるタンパク質や脂質分子などの生体分子で非常に混み合った分子夾雑環境であり，
この分子クラウディング効果によって，細胞内にあるタンパク質や核酸の構造および機能が変化することが報告されている．LLPS も分子夾雑環境の一つとしてみなすことができる．
我々は，LLPS が生じる分子メカニズム，LLPS と分子夾雑環境との関係，そして液滴からのタ
ンパク質の線維化のダイナミクスについて，細胞内にある水のラマンバンドの測定から検討している 1–4．分子夾雑環境も LLPS も，水の中に生体分子が溶けた状態であり，今までは溶けた溶質に着目した研究が行われてきた．しかし，水に着目すると，水の密度は溶質の濃度と反比例の関係にあり，水の密度測定から分子夾雑環境の定量化を行うことができる (図 1)．また水は非常に高濃度であるために，生体分子やイオンの濃度変化に対して鈍感であり，水のラマンバンドを強度標準とした液滴内外のラマンスペクトルを測定うことができる．ラマン散乱強度は非常に弱いことが欠点であるが，水の 濃度は非常に高いために，比較的容易に測定できる長所もある．また，水分子が関与する水素結合の変化も得られる可能性もある．

cytoplasm

Strong5.0

difference
2

0.0

-5.0

0
Weak

nucleus(B)

Diff. (x10 )

滴内外の構成成分の同定などをラベルフリーで行(A)

1cytoplasm
nucleusRaman int (norm.)

することで，液滴内のタンパク質の濃度，構造，液

-10.0
3600

3200

2800

Wavenumber / cm

-1

本発表では，水の ラマン測定を用いた細胞内の分子 図 1. (A) HeLa 細胞の O-H 伸縮振動のラマンイメ

ージと (B) 核と細胞質のラマンスペクトル．

夾雑環境の定量 1,4，細胞内環境測定 2，さらに液– 3000~3700 cm–1 の O-H 伸縮振動バンドにおいて，核の方が細胞質よりもバンド強度が強く，水分子

液相分離に適用し，構造変化，濃度定量を行った結 が多いことがわかる 1．
果 3 などを紹介する．
1. M. Takeuchi, S. Kajimoto, T. Nakabayashi, J. Phys. Chem. Lett. 8, 5241 (2017).
2. T. Sugimura, S. Kajimoto, T. Nakabayashi, Angew. Chem. Int. Ed. 59, 7755 (2020).
3. K. Murakami, S. Kajimoto, D. Shibata, K. Kuroi, F. Fujii, T. Nakabayashi, Chem. Sci. 12, 7411 (2021).
4. D. Shibata, S. Kajimoto, T. Nakabayashi, Chem. Phys. Lett. 779, 138843 (2021).

─ 45 ─

S4-2
非膜オルガネラでの転写制御の解明○井手聖 1, 2、今井亮輔 1, 2, 大地弘子 1, 前島一博 1, 2
1

遺伝研・遺伝メカニズム、2 総研大・生命科学

細胞内には核小体に代表されるような膜のないオルガネラが存在する。最近、それらの多くが「液―液相分離」と言われ、その実態は油と水の分離に見られる原理によって作られる液滴（ドロプレット）であることが細胞生物学のホットトピックとなっている。精製したタンパク質が試
験管内で液滴を形成する一方で、細胞内の環境で実際どのように相分離が起きているのか、それが生理機能にどのように寄与しているのかについては不明であった。本研究では、細胞内で分子の１個１個を観察できる超解像蛍光顕微鏡を用いることで、核小体サブコンパートメンFC（Fibrillar center）領域内に局在する二つの因子、リボソームのRNA合成に関わるRNAポリメ
ラーゼI（Pol I）と、転写因子UBFを通してリボソームRNA遺伝子（rDNA）の振る舞いを観察し、もともと液滴様構造体である核小体内においてrDNAの転写抑制よって新たな液滴様構造体が形成されることを明らかにした。
転写が行われている通常状態ではPol IはrDNAクロマチン上でクラスター形成し、rDNAを拘束していた（図の左）。一方、阻害剤によりPol Iの転写が阻害されると、Pol IがrDNAからはずれ、自由拡散運動となり、核小体内に流動性の高い巨大な液滴となってたまっていた（図の右）。また、ヒト遺伝性疾患の原因となる変異型Pol Iを発現させることでも同様の液滴が出現した。興味深いことに、この変異型Pol Iは正常型に対してドミナントネガティブに働き、その作用機序は液滴から転写開始因子が選択的に排除されるためであることがわかった。以上、核小体内での新たな相分離に伴うrDNAの転写抑制のメカニズムが明らかとなった。細胞内相分離がリボソームの異常に起因するヒト遺伝性疾患の原因となることから、このような細胞の異常や関連疾患の理解が進むことが期待される。

図：核小体内で起こる新たな相分離

─ 46 ─

S4-3
生きた細胞内で非膜オルガネラを「操る」合成生物学技術の開発
Synthetic Biology Tools to Manipulate Membrane-less Organelles in Living Cells○中村秀樹 1, 2
1
2

京都大学 工 合成・生物化学

JST ERATO 浜地ニューロ分子技術○Hideki Nakamura 1

1

Department of Synthetic Chemistry and Biological Chemistry, Graduate School of Engineering,
Kyoto University
2

JST ERATO Hamachi Innovative Molecular Technology for Neuroscience

生きた細胞の中で、複数種のタンパク質や核酸がダイナミックに集合してできる非膜オルガネラ
は、おもに相転移・相分離現象との関連から最近の細胞生物学研究で多くの注目を集めています。
これら非膜オルガネラは、周囲に脂質二重膜の物理的境界をもたないことから短時間のうちに集合・離散することができ、遺伝子発現を介する機構よりも“速く”細胞内シグナル系を制御可能なメカニズムであると考えられます。さらに、従来は知られていなかった、あらたな非膜オルガネラの発見・報告も相次いでおり、これらの生理的意義について更なる研究の進展が待たれます。
しかし多くの場合、非膜オルガネラが形成されること「そのもの」の生理的意義を直接実験的に検証することは難しいのが現状です。その最大の要因は、生きた細胞内で非膜オルガネラの集合・
離散「そのもの」を操作する技術が存在しないことです。従来の主流である遺伝学的手法は、タ
ンパク質の欠損や過剰発現を伴うため、操作したタンパク質の機能が変化し、非膜オルガネラをつくることそのものの意義を直接検証することができません。薬理学的手法も、重要なシグナル系の活性を変化させるものであり、こちらも非膜オルガネラの集合・離散そのものの意義を見ることはできません。
これらの課題を克服するため、私は、「つくる・操る」ことで生命を「理解する」ことを目指す
合成生物学分野の技術を応用して、非膜オルガネラの集合・離散を、生きた細胞内で自在に「操る」ためのツール開発を行ってきました。その過程で、ストレス条件下の細胞内で形成されるス
トレス顆粒をモデルに、非膜オルガネラを「つくる」ツール iPOLYMER、そして「こわす」ツー
ル ActuAtor の開発に成功しました。本講演では、これらふたつの技術の概要と、非膜オルガネラ
研究における合成生物学技術の活用について今後の展望をお話しします。併せて、現在進行中の他の技術開発についてもできる限りご紹介します。

─ 47 ─

─ 51 ── 52 ── 53 ── 54 ── 55 ── 56 ── 57 ── 58 ── 59 ── 60 ── 61 ── 62 ── 63 ── 64 ─5

─ 65 ─

─ 66 ── 67 ── 68 ── 69 ── 70 ── 71 ── 72 ── 73 ── 74 ── 75 ── 76 ── 77 ── 78 ── 79 ── 80 ── 81 ── 82 ── 83 ── 84 ── 85 ── 86 ── 87 ─■公開講座■「味と匂いのバイオイメージング」

O-1
脳活動と行動実験からみたヒトの味嗅覚の知覚システム○小早川 達 1○Tatsu Kobayakawa1
1

Human Informatics and Interaction Research Institute,

National Institute of Advanced Industrial Science and Technology (AIST)

味覚・嗅覚などの化学受容感覚は日常の「食事」と直接結びついており，それらの感覚は生活の質に大きな影響を及ぼす．日常生活では「味」という言葉が頻繁に用いられるが，我々が感じる「味」は純粋な「味覚- つまり舌から入力される感覚」ではない．しかし我々が何かを食べている時に，味覚以外の感覚の関与を意識する機会は少なく，「味」に対する違和感を「味覚異常」と勘違いすることが往々にして起き，実際に味覚の異常･低下を訴える患者を対象とした調査では，味覚の低下を訴える患者の半数が，味覚ではなく嗅覚の低下が認められる．つまり味とは味覚だけでなく，嗅覚影響が大きくさらに触覚，聴覚も口腔内の感覚に影響を及ぼす．
前述のように日常生活の中では味覚と嗅覚が合わさった「味」を私達は「口の中で」感じている．しかしながら嗅覚は鼻の奥の嗅粘膜で受容される感覚であり，その感覚が味覚と一体となり口の中での感覚になっている．味覚と嗅覚の相互作用について述べられている報告が数多くある．それらは味覚による嗅覚の増強あるいは抑制効果，もしくはその反対であり，前述の一体感についての言及はほとんどない．そこで筆者らは同時性判断課題を用いて，味嗅覚の関係を調べた．同時性判断とは二種類の刺激を短い時間差を設けて提示を行い，二種類の刺激が主観的に同時か，同時でないかの判断を行わせる心理物理課題であり，一般的には異なる感覚モダリティ(聴覚と視覚など)間の感覚間相互作用の時間特性の解明のために用いられる．その結果，味覚と嗅覚の組み合わせが日常でよくある場合(食塩と醤油の香り)条件
下ではそうでない条件(食塩と葉の香り)と比較して味覚と嗅覚の一体感(時間分解能の低下)が生じることがわかった．また同時判定課題遂行時の味覚と嗅覚の事象関連電位計測を行った結果，参加者が「同時」と判断した場合は「同時でない」と判断した場合と比較して，味覚一次野の活動が有意に抑制されていることを見出した．
本講演でヒトの味嗅覚の脳機能計測に触れると共に，行動実験による味嗅覚の知覚に対する経験の影響についても話をさせていただけると幸いである．

─ 91 ─

─ 92 ─O-3

味やニオイの刺激で変わる！動物の脳活動○溝口尚子 1
1

明海大 歯学部 生理学分野

ニオイや味は、動物にとって大切な情報源です。たとえば、ニオイは身の周りにどんなものがあるか、今いる場所が安心できる場所か、それから食べ物のありかを探るときにも役立っています。そして食べ物を口に入れると味を感じますが、実はニオイは味の感じ方にまで影響を及ぼします。すぐ実感できる例では、風味豊かで美味しく感じるコーヒーであっても、鼻をつまんでニオイを感じない状態にして飲んでみると、たちまち苦い味だけがする水のように感じます。
ところで、動物は味やニオイを身体のどこで感じるのでしょうか。はじめに、センサーとしてはたらく細胞が味やニオイを情報として受け取ります。味の情報は味蕾にある味細胞によって受け取られます。その後、受け取った情報は感覚神経によって脳に伝えられ、そこで情報の処理が行われます。味やニオイの特徴を具体的にコレ！と決める（認識する）のは、脳の中でも一番外側にある大脳です。今回は、この大脳の活動に焦点を充てます。
大脳と一口にいっても、左右の大脳半球に分かれていて、より細かな区域（領域）ごとに機能が異なります。これを機能局在といいます。理解を深めるにあたって、この機能局在がヒト以外の動物の脳にも存在することを紹介します。何かに触れた感覚を処理するために活動する領域と、味やニオイを情報として処理するときに活動する領域は違います。そのことを知ったうえで、動物実験で観察できる味やニオイの刺激をしたときの脳活動を観てみましょう。
我々の研究室では、脳の活動を目でとらえることを目的に、条件や刺激の種類によって活動する部位の違いを動画で記録するイメージングという方法をよく用います。この方法で大脳の表面を観察すると、味を与えたときとニオイを与えたときとで活動が活発になる領域がはっきり異なる様子をみることができます。味とニオイを別々に与えたときと、ふだん食べている食事のように、味とニオイを同時に与えたときでは脳でみられる活動が異なります。また、イメージング実験前に、実験で刺激として使用する味とニオイを動物に経験させると、脳の活動はさらに大きく変化することが明らかになってきました。当日は、実際の実験結果をいくつか紹介します。一方、この方法だけでは、細胞レベルの細かいことはわかりませんので、他の方法で得られた結果を知りたくなります。世界に目を向けると、さまざまな手法で研究が進められていることに驚かされます。味やニオイを動物に与える実験で、脳がどんな風に活動して見えるか、これまでに明らかになっていることを我々の研究室で得られた結果と織り交ぜながら紹介する予定です。

─ 93 ─

■発表者索引■

ア
青江誠一郎
青枝 大貴
秋田 佳恵
安宅 光倫
イ
石田
石橋
石原
石原
泉
市岡
市橋
井手
井上
今石
今井
今村
今村
岩槻

孝宣
健一
孝也
直忠
佐和
隆幸
理江
聖
広大
潤
亮輔
健志
寿子
健

ウ
上杉健太朗
上田 晴子
上原 章寛
植屋 佑一
牛山
明
内田
結
内橋 貴之
梅澤芙美子
梅澤 雅和
エ
衛
榎木
円谷

荻野
長部
尾高
小俣

P11
P7
P3
P5

S3-6
P9
S2-1
S2-1
P20
P9
P16
S4-2
P9
P13
S4-2
P34
P2
O-2

P36
P1
P36
P16
P21
P25
P8
P8
P15、P16

澤峰
亮介
徹之

P18
P5
P23、P24

オ
大久保喬平
大坂
昇
大澤 大輔
太田 善浩
大友 康平
大野 尚仁
大場亜衣子
岡 浩太郎
岡田 欣晃
岡本 晃一

P15、P16
P17
P36
S2-2
P5
P9
P14
A-4、P18
P7
P17

英賢
謙二
椋介
大樹

P22
P24、P23
P19
奨励賞受賞講演 1、
P7、P6

カ
加来 友美
影山 彩織
加藤
薫
加藤 晃一
上村 真生
河合 功治
川上 隼人
川喜 多愛
川口 馨加
川久保愛美
觀音 裕考

P23
P6
S3-2
P8
P15、P16
P32
P32
P17
P12
P10
S2-1

キ
菊川
菊地
北村
金

P2
P26
S3-6
P8

琴美
和也
成史
明美

ク
朽津 和幸
國田
樹
久保美香子
栗山 恵弥

P30、P31
P1
P9
P20

コ
鯉沼 真吾
甲賀 大輔
小島 正樹
後藤
拓
小西 輝昭
小早川 達
小林健太郎
五味 晶彦
小山 正平
権田 幸祐
今野
翔

P29、P28
S3-1
P9、P33、P35
P27
P36
O-1
P4
P33、P35
P7
S3-6
P33、P35

サ
齋藤喜久恵
齊藤 恭子
齋藤
卓
斎藤 太郎

P10
S3-2
P34
P14

─ 97 ─

齋藤
裕
坂田 喬亮
佐藤 匡史
佐藤 良勝
澤 麻理恵

S3-4
P35
P8
S3-3
P21

シ
椎野 颯真
澁谷 仁寿
島﨑健太朗
進藤 大輝
新藤
豊

P33、P35
P27
S3-2
P30
P18

ス
杉浦 一徳
杉本 憲治
杉山 正明
洲崎 悦生
鈴木 吾大
鈴木 麻由
鈴木真理子
鈴木
亮
墨野 倉誠

P23
P17
P8
S1-1
S3-4
P13
P10
P6、P7
P9

セ
世良

俊博

P15

ソ
曽我
曽我

康一
公平

P2
P15、P16

タ
大地 弘子
髙木 智子
高野 裕大
髙橋 泰伽
高本 英司
竹腰 和馬
武田 志乃
竹松 真歩
竹森
洋
田代
充
多田
寛
田中 直子
田中
光
田邉瑠里子
田村
勝

S4-2
P3
P14
P4
P16
P32
P36
P15
P12、P13
P9
S3-6
P10、P11、P20
P14、P19、P20
P27
P27

ツ
堤

元佐

P4

テ
出村茉莉子
寺田 靖子

P9
P36

ト
戸田

P1

真志

ナ
永井 健治
永田 典子
永田 莉子
中林 孝和
中村 岳史
中村 秀樹
中村 優子
中山 俊憲
行方衣由紀

P23、P24、P37
P3
P10
S4-1
P28、P29
S4-3
S3-2
P22
P14、P19

ニ
西浦美也子

P26

ヌ
塗谷

睦生

S3-5

ネ
根本

知己

P4、P5

ノ
野村慎太郎

P27

ハ
萩原 雄樹
間 裕太郎
橋本 研志
長谷川明洋
長谷川晃汰
馳澤盛一郎
服部 研之
服部
満
花田賢太郎
濵口 正悟
林
良雄
原島 秀吉

P31
P28、P29
P30、P31
P22
P30
P3
P21
P24
S3-2
P14、P19
P33、P35
S2-3

─ 98 ─

ヒ
檜
垣匠
樋口ゆり子

A-3、P1、P2、P3
A-1、P25

フ
深井
深澤
福島
福田
古川
古田

P20
S3-2
P37
P29
P12
P12

梨沙
征義
俊一
光則
紗帆
享史

矢下亜紀良
山口 真由
山口 樹也
山﨑 康平
山下 富義
山下 優音
山田 勇磨
山本条太郎
ユ
柚木

康弘

P8

秀夫
靖雄
優花
早希
大一

P15
P7
P31
P8
P1

ホ
星野 真人
星 まどか
堀田 耕司
堀 雄一郎

P36
P33、P35
P18
P26

ヨ
横田
吉岡
吉沢
吉田
吉田

マ
前島
前田
松村
松山
丸山
丸山

一博
美和
義隆
哲也
一雄
翔太

S4-2
P13
P9
P17
P6
S2-1

ワ
和沢 鉄一
和田 健司
和田 直之
渡邉健志郎
渡辺 大輝
渡邉 実夢

ミ
三尾
溝口
光山
宮川
宮地
宮園

建斗
尚子
統泰
拓也
美沙
佳歩

P11
O-3
S3-4
A-2
P28
P20

ム
宗像
村井
村田

理紗
利昭
香織

P32
P20
P17
P26
P25
P31
S2-3
奨励賞受賞講演 2

P24、P37
P17
P29
P30
P8
P12

C
Ganser ChristianShi-Wei Chu

P8
S1-3

Aklima Jannatul

S2-2

Shahi Imam Reja

P26

Pal Soumyadip

S2-1

Quang Tran

P24

Cong Quang Vu

P37

J
R

P6、P7
P32
P17

モ
毛内
森川
守島
平田
森本

拡
知彦
健
洋子
康幹

S1-2
P25
P8
P12
P9

ヤ
矢木

宏和

P8

S
T
V

─ 99 ─

■ 総会資料 ■2021 年度 日本バイオイメージング学会
総会資料2021 年 9 月 10 日
日本バイオイメージング学会
会長 岡 浩太郎
会場：オンライン開催
議題：2020 年度事業報告、 2021 年度事業経過報告および 2022 年度事業計画
総会議案
各委員会より
１．庶務報告２．財務報告３．会計監査４．企画委員会
５．バイオイメージング誌委員会
６．bioimages 誌編集委員会
７．ホームページ編集委員会
８．集会委員会
９．賞選考委員会
１０．研究助成選考委員会
１１．講習会委員会
１２．国際交流委員会
１３．新技術情報委員会
１４．男女共同参画委員会
１５．人事
１６．その他各委員会資料
１．庶務報告（加藤(晃)）
20 年度事業報告
1） 会報などを各委員会と協力して発送
2） 会員情報の管理・更新
3） その他

─ 103 ─

21 年度事業経過報告
1） 事務局の移転に伴う、定款、入会申込書、会員情報変更届の修正
2） 会報などを各委員会と協力して発送
3） 会員情報の管理・更新
4） その他
22 年度事業計画
1） 会報などを各委員会と協力して発送
2） 講習会への協力
3） 公開講座4） 会員情報の管理・更新
5） その他
２．財務報告（太田）（添付資料 参照）
20 年度財務報告
1） 収支のまとめ
2） 会員への会費振込依頼、入金確認
21 年度財務経過報告
1） 収支のまとめ
2） 会員への会費振込依頼、入金確認
22 年度財務計画
1） 収支のまとめ
2） 会員への会費振込依頼、入金確認
3） 学術集会会場での会費徴収
３．監査（木原、船津）
1） 会計監査の報告
４．企画委員会（鈴木(亮)）
20 年度事業報告
1） 賛助会員への勧誘
21 年度事業経過報告
1） 賛助会員への勧誘
2） 第 30 回学術集会 記念シンポジウムの企画

─ 104 ─

22 年度事業計画
1） 賛助会員への勧誘
５．バイオイメージング誌委員会（朽津）
20 年度事業報告
1） 会報発行 和文誌「バイオイメージング」第 29 巻 1・2 号（通巻 86・87 号）合併号）
発行
2） 和文誌「バイオイメージング」の新たな Web site を、日本バイオイメージング学会のホームページ内に開設し、https://j-bioimaging.org/bioimagingmag/ 新体制になって以来刊行した、第 22 巻 1 号（通巻 72 号; 2013 年 6 月刊行）から最新号までを公開
3） 和文誌「バイオイメージング」と英文誌「Bioimages」の編集方針の見直し（和文の総説・解説、原著論文は、「Bioimages」に掲載の方向）に基づく、投稿規定の修正とホームページへの掲載
4） 投稿（研究室紹介等）呼びかけ、特集記事の充実
21 年度事業経過報告
1） 和文誌「バイオイメージング」第 30 巻 1 号(通巻 88 号)を発行、30 巻 2 号(通巻 89号)を 2021 年 8 月に刊行予定
2） 和文誌「バイオイメージング」の Web-site での公開、和文誌ホームページの充実
3） 投稿（研究室紹介等）呼びかけ、特集記事の充実
4） 和文誌「バイオイメージング」と英文誌「Bioimages」とのあり方を検討
22 年度事業計画
1） 和文誌「バイオイメージング」第 31 巻発行
2） 和文誌「バイオイメージング」の Web-site での公開、和文誌ホームページの充実
3） 投稿（研究室紹介等）呼びかけ、特集記事の充実
4） 広告掲載の必要性について検討
６．bioimages 誌編集委員会（小島）
20 年度事業報告
1） Bioimages Vol.28 の論文のアップロード
2） 投稿規程の改訂（和文原稿の受付）
3） Vol.5（1997）以降のバックナンバーのオンライン化
21 年度事業経過報告
1） Bioimages Vol.29 の論文アップロード準備中
2） Vol.4（1996）以前のバックナンバーのオンライン化

─ 105 ─

22 年度事業計画
1） Bioimages Vol.30 の論文アップロード
2） バックナンバーのオンライン化の継続
７．ホームページ編集委員会（曽我）20 年度事業報告
1） 特になし
21 年度事業経過報告
1） 特になし
22 年度事業計画
1） 特になし
８．集会委員会（永井）20 年度事業報告
第 29 回学術集会
日程： 2020 年 11 月 20 日（金）～ 21 日（土）会場： オンライン開催
大会長： 根本 知己 （岡崎自然科学研究機構 生命創成探究センター）
参加費： 一般（正会員・協賛学会員：4,000 円、非会員：6,000 円）
学生（学部学生（4 年生以下）無料、会員大学院生（学部 5 年生以上）3,000円、非会員：5,000 円）
後援： 自然科学研究機構 生命創成探究センター
公開講座： 開催なし
21 年度事業経過報告
第 30 回学術集会
日程： 2021 年 9 月 9 日（木）～ 10 日（金）会場： オンライン開催
大会長： 田中 直子 （大妻女子大学 家政学部 食物学科）
参加費： 一般（正会員・協賛学会員：4,000 円、非会員：6,000 円）
大学院生および学部 5 年生以上（学生会員：3,000、非会員：5,000 円）
学部 4 年生以下：無料
公開講座「味と匂いのバイオイメージング」
日程： 2021 年 9 月 11 日（土）10：00～12：00 オンライン開催

─ 106 ─

22 年度事業計画
第 31 回学術集会・公開講座
日程：2022 年 9 月 3 日（土）～ 5 日（月）会場：大阪大学銀杏会館
大会長： 永井 健治（大阪大学産業科学研究所）
９．賞選考委員会（田中）
20 年度事業報告
1） 奨励賞：行方 衣由紀（東邦大学薬学部）
21 年度事業経過報告
1） 奨励賞：小俣 大樹（帝京大学薬学部）
山本 条太郎（産業技術総合研究所）
22 年度事業計画
1） 奨励賞について、学会ホームページに推薦のお願いを掲載予定。
１０．研究助成選考委員会（菊池）20 年度事業報告
1） 特になし
21 年度事業経過報告
1） 特になし
22 年度事業計画
1） 特になし
１１．講習会委員会（加藤(薫)）
20 年度事業報告
1） 特になし
21 年度事業経過報告
1） 特になし
22 年度事業計画
1） 計画中（COVID-19 の収束状況などを考慮して今後の開催を検討）─ 107 ─

１２．国際交流委員会（鈴木(和)）20 年度事業報告
1） 次回国際シンポジウム開催に向けての準備
21 年度事業経過報告
1） 次回国際シンポジウムの開催に向けての準備
22 年度事業計画
1） 次回国際シンポジウム開催に向けての準備
１３．新技術情報委員会（根本）
20 年度事業報告
1） 特になし
21 年度事業経過報告
1） 特になし
22 年度事業計画
1） 特になし
１４．男女共同参画委員会（洲崎）
20 年度事業報告
1） 男女共同参画学協会連絡会第 18 期運営委員会（オンライン開催）に出席
2） 内閣府理工チャレンジ～女子学生・生徒の理工系分野への選択～リコチャレ応援団
体として参加、理工系女子応援ネットワークに参加（ただし 20 年度は、実質的取り組みは中止となった）
3） 女子中高生夏の学校（8 月 7 日～9 日）はオンライン開催となり、協賛・参加してきたポスターセッションは行われなかった。
21 年度事業経過報告
1） 男女共同参画学協会連絡会第 19 期運営委員会（オンライン開催）に参加
2） 内閣府理工チャレンジ～女子学生・生徒の理工系分野への選択～リコチャレ応援団
体として参加、理工系女子応援ネットワークに参加
3） 女子中高生夏の学校（8 月 8 日～9 日；オンライン開催）において「ポスター・キャ
リア相談」に参加
22 年度事業計画
同様の活動を継続予定

─ 108 ─

１５．その他
審議事項
１）第 31 回学術集会の準備について
２）その他

─ 109 ─2020年度決算書 事2 (2020年1～2120年22020年1

1本バイバイオイメージング会長

岡

理事事(務担務担当太田

一般グ会
収入

太郎太
太

支出

2019年より繰越
利息
グ費第6回国(ング剰余会

5,047,097
5931,000
1,043,897

通信費
謝会・人件費
男女共同参画奨励賞

22,272
192,000
10,000100,000

収入会

7,021,999

振込手数料
HP作成維持費
雑費
小会

2,090
71,5002,112
399,974

2021年度への繰越
支出会

特別別会事国(国グ準学会等1
収入
2019年度より繰越

収入会

6,622,025
7,021,999

支出
4,290,669

4,290,669

─ 110 ─2021年度への繰越

支出会

4,290,669

4,290,669

2022年度予算案(2(2022年11～1022年2022年12
一般別会
収入

支出

繰り越し
別費

収入会

5,413,825
931,000

バイオイメージング印刷・送付
Bioimages アップロード費
ホームページ管理費
謝学・人件費
英文校閲費

6,344,825

別議費
奨励賞･研究助成
男女共同参画（分担学 他2
学術集別準備学
雑費
予備費

支出出

特別別会（国際学国準備学会2
収入
繰り越し
収入会

250,000 広報
100,000 広報
70,200 広報
50,000 庶務、会計
100,000 編集
10,000 庶務
100,000 賞選考
95,000 男女共同・国際
300,000 集会
60,000 庶務・会計
5,209,625

6,344,825

支出

4,290,669
4,290,669

2022年度への繰越
支出出─ 111 ─4,290,669
4,290,669

─ 112 ── 113 ─���イバイオイメージング��
���

�

則

��条

この学会は、日本バイオイメージング学会という。

��条

この学会は、����������の���におく。

��条

この学会は、��員会の�������の�に���おくこと���る。

���
��条

��お����

この学会は、会員の����、��の��な��に会員��お����学���会との����の�とな�、バイオイメージング学の�����は��、���学�、��の��に���ること���と�る。

��条

この学会は、�条の������る��に�の����う。
�����会お����会の���

会�、����お����の�����の��学���会との��お�������の��お������の��� ��お����
��の�������る��に��な��

���
��条

会

員

この学会の会員は、�のとお�と�る。
��会員

バイオイメージング学に��る学���は�����る������、この学会の��に���、�に������会����る�� 学�会員�学��はこ�に��る学�に���、バイオイメージング学に��の�る学��

��る学�����、この学会の��に���、�に������会����る�
� 団体会員

この学会の��に���、�に������会����る団体

�

��会員

この学会の������、�に������会��������る���は��

�

��会員

バイオイメージング学と本学会の��に�いに�������、��員会の������条

会員にな�うと�る�は、会������会�������、��会の�����な���な�
ない。

��条

会員は、この学会����る���お����の��������ること���る。

��条

会員は、�の��に���������る。

���条

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�会

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���お������の�����、����

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会員��会��うと�る�は、�������会�����な���な�ない。

─ 114 ─����

��が�の��の�����るときは、����の��を��、��がこ�を�名�ることができる。
� ��を��し�とき�

この��の��とし�の�����し�とき�

この��の名�を���、�るいはこの��の�����る��をし�とき������の��は、い�なる��が����こ�を��しない。

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この���は、�の��を��。
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事

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�名以内

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��事は、��で���名、����名、�����事�名、�����事�名、国�����
��名を��、���事と�る。

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� ���は��を��し、���事��る�は����を���る。
������事、�����事は、��を��し、�事�の��事����き事�を��。

�国������は、�事�の��事����き、�外国とのバイオイメージング��の�����と��を��、国�バイオイメージング��を���る。

����

�

�事は、�事�を��し、この��の�����な事���い���し、���る。

����事は���事�を��し、��な事���い���し、�事���る。

��任�事は、�事�の��事����き、��の��事�を���る。

�����事は��� 59 �の��を��。

�������は����を��し�、この��の���の��事�����る�事�の��事���し、�事を�き���る。

����

�

��、���、�����事、�����事、�事の任�は��と�る。

�

�事の任�は��とし、������を���る。

��任�事の任�は��と�る。但し、再任を妨げない。

����の任�は��と�る。但し、再任を妨げない。

� ����は����る��の任�は、�任�の�任��と�る。
���は、�の任����で��任�が�任�る�では、な�、�の��を��。

� ��は、この��の��とし����し�ない��の�����、��は��の事�の�る���は、�の任��で��������の�����、��が任を��ことができる。
����

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─ 115 ─����、��とする。

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����会�、��会��������と���と�、い�����すること���る。

会��、会����の��の��上�ら会����す����を�し��会の��を���れ�����、�の��の�����ら���������会を��しなければならない。

�������会の���、会�とし、���会の���会�の��会�の�����る。

�����会の���、�な�と�������、�の会����す����、�������を��し������会�の��を�����する。

�����の���、���会���し��の��を�けなければならない。
� �������������い�の��

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�会�、会����の��の��上��しなければ、�の��を����をすること���ない。
��し、���������を����ら�������し���、���とみなす。

�����会の���この�����の����る��を����、���の���を����し、����の��、��の�するとこ���る。

�����会の��の�������し����、会����する。

����

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���会���会����する。

����会の���、会��これ���る。

�������会��������の��の��上��しなければ��を��すること���ない。

�������会�、この�����の����る��を����、���の���を����し、����のと����の�するとこ���る。

������会�、����会����する。��し、会����と�����、���、�����の��の��上�ら会�の���る��を�し���の���と���、会������会を��しなければならない。

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�し、���������を����ら�����を��し��の�、���とみなす。

���会の���、この�����の����る��を����、����の���を����し、����のと��、��の�するとこ���る。

������������会�����とし�����る。

�会、���会�����会の����、�����し、�������������上���
押印の上、これを保存する。

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事業に伴う収入����ら��る��

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その他の収入�

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この��の����のう������事�の��に�って������とする��も�����
��と�て���が��する。

�������������������に供�て�ならない。����この��の事業�����を�ない��が�るとき�����������の��を��その��に�����������の供することができる。

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この��の事業��に�する�������事業に伴う収入������ら��る���の��をもって支弁する。

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その��も�����を����に�入��������に���すものとする。
����収支��で��るものを�������に��の��を�������の��を��うとするとき�����������の��を��な���ならない。�入��その�����の収入をもって��する���入�を���に�いても��とする。

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この��の������������に���������に�る。

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らない。

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この��の��に伴う���������������に�いて�の�のの��の���の��を�て�この��の��に��の��を�する��事業に��するものとする。

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��������所�、�������所属��〒467-8603 ���名古屋市���������

名古屋市

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ことができる。������、��������������属する���������������
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������、���������と併任することができる。
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����則��������、�������と��������とする。

付則��則�、����年��������する。

─ 118 ─�会�会員���会�������������
����員�������円

���会員

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����会員���,���円

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����会員 �������,���円���� ����員�����会員�����会����,���円���会員�������員���������会�������

─ 119 ─

日本バイオイメージング学会入会のお願い
日本バイオイメージング学会では会員の募集を致しております。会員の方の周囲に画像に関心のある方がおられましたら入会されるようご勧誘をお願い致します。入会される方は、本誌末の入会申込書をご利用ください。
正会員：
学生会員：

５，０００円
２，０００円

団体会員：

１０，０００円（図書館対象）

賛助会員：一口 １００，０００円
評議員会費：

８，０００円

申込先
学会事務局〒467-8603 名古屋市瑞穂区田辺通３－１
名古屋市立大学大学院薬学研究科 生命分子構造学分野内日本バイオイメージング学会事務局
TEL：052-836-3448 FAX：052-836-3450
E-mail：office@j-bioimaging.org
郵便振替：００１３０－３－７３５６５
名 義：日本バイオイメージング学会事務局

日本バイオイメージング学会賛助会員入会のお願い
本学会は、画像解析技術を基に生命原理を解明し、人類の福祉に貢献することを目的としております。つきましてはこの趣旨に御賛同いただき御機関に賛助会員として参加いただけ
ればありがたく思います。日本における基礎生命科学と応用開発研究との有機的結合実現のためぜひ御協力ください。
賛助会員入会御承諾の場合は下記口座への会費の振込とともに、本誌末の入会申込書（学会
入会申込書と同じ）に必要事項を御記入の上、返送をお願い致します。
賛助会員 会費：一口 年１０万円
会費振込先：郵便振替：００１３０－３－７３５６５
日本バイオイメージング学会事務局
特典：展示会での優先展示、学会誌、広報誌、学会要旨集への広告優先権
問合せ先 〒467-8603 名古屋市瑞穂区田辺通３－１
名古屋市立大学大学院薬学研究科 生命分子構造学分野内日本バイオイメージング学会事務局
TEL：052-836-3448 FAX：052-836-3450
E-mail：office@j-bioimaging.org

─ 120 ─

会費納入のお願い
日本バイオイメージング学会学会費の納入をお願いいたします。
すみやかな納入をお願いいたします。
正会員：

５，０００円

学生会員：
団体会員：

２，０００円
１０，０００円（図書館対象）

賛助会員：一口 １００，０００円
評議員会費：

８，０００円

会費振込先：郵便振替：００１３０－３－７３５６５
日本バイオイメージング学会事務局

学会のホームページは以下の通りです。ご利用ください。
http://j-bioimaging.org

─ 121 ─No.＿＿＿＿＿＿＿

入会申込書 (FAX / e-mail でも可)
20___年__月__日
日本バイオイメージング学会定款を認め、日本バイオイメージング学会に入会いたします。
（〇をつけてください）
１．正会員：5,000 円
学生： 2,000 円
団体（図書館）：10,000 円
賛助会員：100,000 円（１口）
２．入会に際しては予め送金してください
送金金額：\___,______
但し＿＿＿＿＿＿＿として郵便振替にて送りました
ふりがな：
氏名：
所属：機関名：部科名：
住所：〒（賛助会員の場合連絡者）
身分：（学生の場合：学年）

電話：
ファックス：
e-mail：賛助会員の場合口数：＿ 口
３．学生会員の場合のみ、ご記入ください
指導教員の氏名：指導教員の e-mail：４．研究分野：（〇をつけてください、複数可）
１．分子生物・生化
５．分子構造・分子モデル・ドラッグデザイン
２．生物物理６．コンピューターソフトウエア
３．細胞生物
７．コンピュータハード・機器開発
４．医学・生理８．その他 （具体的に記入してください）ーーーーーーーーーーーーーーーーーーーーー
申込先：日本バイオイメージング学会事務局
E-mail office@j-bioimaging.org
郵送：〒467-8603 愛知県名古屋市瑞穂区田辺通３－１
名古屋市立大学大学院薬学研究科
生命分子構造学分野 内
会費振り込み先
郵便振替：００１３０ー３ー７３５６５（料金振込人払い）
名義人名：日本バイオイメージング学会事務局

─ 122 ─２０２１年度の各委員会：名簿
○：委員長

１．会長
岡 浩太郎
２．副会長
加藤 晃一、洲崎 悦子
３．庶務〇加藤 晃一４．財務〇太田 善浩

５．企画〇鈴木 亮、竹本 邦子、橋本 香保子、長谷川 明洋＊公開講座の企画を含む（学術集会付設の公開講座は大会長が企画）
６．バイオイメージング誌編集加藤 有介、菊地 和也、○朽津 和幸、曽我 公平、檜垣 匠、樋口 ゆり子、 宮川 拓也
７．bioimages 誌編集
朽津 和幸、小島 清嗣、○小島 正樹、斎野 朝幸、洲崎 悦子、 寺川 進、宮川 拓也
８．ホームページ編集
岡 浩太郎、小島 正樹、朽津 和幸、○曽我 公平、檜垣 匠
９．集会
太田 善浩、加藤 薫、立野 玲子、○永井 健治
１０． 賞選考
大塩 力、高松 哲郎、○田中 直子、田之倉 優、寺川 進、浜口 幸久
１１． 研究助成選考○菊地 和也、鈴木 和男、中山 俊憲、根本 知己

１２． 講習会
岡部 弘基、○加藤 薫、櫻井 孝司、佐々木 章、中村 岳史、
企業から（オリンパス、カールツァイス、ニコン、浜松ホトニクス）
１３． 国際交流
木原 裕、○鈴木 和男、鈴木 亮、永井 健治
アドバイザー A. Wheatley, J. Girkin, F. Maxfield, R. Hoffmann, N. Demaurex,
Lowrel Bolin, D. Ehrhardt, M. E. P. Murphy, W. Dawson, M. Jaconi＊国際バイオイメージング学会の対応を含む
１４． 新技術情報
荒井 祐仁、加藤 薫、鶴旨 篤司、○根本 知己、晝馬 亨、三井 直人
１５． 男女共同参画
加藤 有介、朽津 和幸、○洲崎 悦子、田中 直子、橋本 香保子、樋口 ゆり子

２０２１年度役員
１．役 員
１）評議員（2022.12.31 まで）（現員 38 名）
荒井 祐仁、池水 信二、大塩 力、太田 善浩、岡 浩太郎、加藤 薫、加藤 晃一、 加藤 有介、
川西 徹、菊地 和也、朽津 和幸、小島 正樹、 齋野 朝幸、洲崎 悦子、鈴木 和男、鈴木 亮、
曽我 公平、竹本 邦子、立野 玲子、田中 直子、田之倉 優、鶴旨 篤司、寺川 進、 冨田 光子、
永井 健治、 中村 岳史、中山 俊憲、 根本 知己、橋本 香保子、長谷川 明洋、浜口 幸久、
檜垣 匠、樋口 ゆり子、 晝馬 亨、古野 忠秀、宮川 拓也、三井 直人、矢木 宏和
２）監 事（2 名：2022.12.31 まで）
木原 裕、船津 高志
３）理 事（16 名：4 年任期、2 年毎半数改選、評議員により互選）（現員 15 名）
2022.12.31 まで
菊地 和也、朽津 和幸、洲崎 悦子、鈴木 和男、鈴木 亮、 田中 直子、根本 知己
2024.12.31 まで
太田 善浩、岡 浩太郎、加藤 薫、加藤 晃一、小島 正樹、曽我 公平、永井 健治、檜垣 匠
３）特任理事（ 2 年任期）
（6 名まで）2022.12.31 まで
大塩 力、田之倉 優、浜口 幸久
４）会長、副会長、庶務担当、財務担当（理事により互選：2 年任期）会
副長：2022.12.31 まで：岡 浩太郎
会

長：2022.12.31 まで：加藤 晃一、洲崎 悦子

庶務担当理事：2022.12.31 まで：加藤 晃一
財務担当理事：2022.12.31 まで：太田 善浩
２．名誉会員（非役員）新井 孝夫、荒田 洋治、石村 巽、大木 和夫、柏木 浩、関塚 永一、脊山 洋右、 中西 守、
南谷 晴之、 安岡 則武

バイオイメージング 第 30 巻 第 2 号
2021 年 8 月 27 日発行
発行所：日本バイオイメージング学会
名古屋市立大学大学院薬学研究科 生命分子構造学分野 内〒 467-8603 名古屋市瑞穂区田辺通 3-1
TEL:052-836-3448

FAX:052-836-3450

E-mail: office@j-bioimaging.org
URL: http://j-bioimaging.org/

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