目次

発刊にあたって…………………………………………………………… 1
Ⅰ．疾病の概要……………………………………………………… 2
Ⅱ．疫学……………………………………………………………… 3
1．海外における流行の歴史と現況…………………………… 3
2．国内における流行の歴史と現況…………………………… 3
Ⅲ．病原体と感染…………………………………………………… 5
1．病原体………………………………………………………… 5
2．感染と保菌…………………………………………………… 7
1）雌馬
2）雄馬
3. 伝播… ………………………………………………………… 7
Ⅳ．臨床症状と診断法……………………………………………… 8
1．臨床症状……………………………………………………… 8
1）雌馬
2）雄馬
2．臨床病理学的診断法………………………………………… 8
3．病原学的診断法……………………………………………… 9
1）採材法
2）菌分離と同定
3）PCR 検査
4．血清学的診断法…………………………………………… 15
5．病理学的診断法…………………………………………… 161）部検所見
2）病理組織学的所見
Ⅴ．予防と治療…………………………………………………… 18
1．予防………………………………………………………… 18
2．治療………………………………………………………… 181）洗浄と抗菌薬投与
2）陰核洞切除手術
3）淘汰
おわりに………………………………………………………………… 20

発刊にあたって1977 年、英国で突然発生した馬伝染性子宮炎（CEM）の世界的な拡大を目の当たりにした軽種馬防疫協議会は、本病のわが国への侵入の危険性を警告し関係者への啓蒙を図る目的で、日本中央競馬会競走馬総合研究所栃木支所の鎌田・田淵両氏に馬伝染性子宮炎のパンフレット作成を依頼、1980 年の 3 月に関係者へ配付しました。北海道で CEM の最初の発生が確認されたのは、そのわずか 2 か月後のことです。本病は、その後毎年、繁殖シーズンになると日高地方を中心に発生が認められ、関係者はその対応に追われながらも、清浄化への取り組みを始めました。本パンフレットの第 2 版が発行されたのは、ちょうどその頃のことです。
本病は関係者の長年の努力により、2005 年を最後に摘発例が認められなくなり、現在のわが国は清浄状態を維持しています。
このパンフレットは、日本中央競馬会の安斉氏が 1997 年に作成
した第 2 版の改訂版に相当するものであり、日本中央競馬会馬事部防疫課および競走馬総合研究所栃木支所の関係者に執筆をお願いしています。本版では近年の国内外での発生状況や国内清浄化への道のり、新たに研究開発された技術を紹介しながら、現時点での本病に関する最新の情報を出来るだけ幅広く記載していただきました。また、
本パンフレットでは、本病の診断、治療、防疫に関わる項目についても、詳細かつ具体的に掲載されております。執筆にご協力いただいた皆様には、心より感謝申しあげます。
平成 25 年 11 月
公益社団法人1

中央畜産会

Ⅰ 疾病の概要
馬 伝 染 性 子 宮 炎（Contagious equine metritis：には多量の T. equigenitalis が含まれており、他馬

CEM）は、グラム陰性微好気性桿菌であるTaylorella

への感染源となる。馬同士の伝播は主に交配によっ

equigenitalis （T. equigenitalis ）の感染によって起て起こるが、人や器具を介した間接的な伝播例もこるウマ科の動物に特有の性感染症で、交配によっ多い。感染した雌馬、あるいは感染雌馬と交配して伝播して雌馬の子宮炎・不妊症をもたらす。本

た種雄馬は、高い確率で保菌馬となる。保菌部位

病は、1977 年に英国の軽種馬生産牧場で最初に大は雌馬では陰核、雄馬ではペニスであり、これら

流行し、その後はヨーロッパ、オセアニア、米国、の部位では長期間にわたって菌が生存する。

そしてアジアと世界中に広がった。わが国でも診断は発症馬では子宮頸管から、保菌が疑われ1980 年に北海道日高地方の軽種馬生産牧場で発生る馬では上記の保菌部位から採取したスワブを用が確認されて以降、20 年以上にわたり日高・胆振

い、病原学的診断（菌分離または PCR 検査）によっ地方で発生が継続していたが、関係者の努力によて行う。T. equigenitalis は多くの種類の消毒薬やり少しずつ発生数が減少し、2005 年 6 月以降は保抗菌薬に高い感受性を示すことから、治療は消毒菌馬も摘発されなくなったことから、2010 年の馬薬を用いた洗浄と薬物による局所治療が行われる。

防疫検討会において学識経験者による評価を受け

しかしながら、本菌は解剖学的に複雑な構造をも清浄化達成が確認された。諸外国においては、オー

つ外部生殖器の恥垢（スメグマ）の中で長期間生

ストラリアでは本病は清浄化されている。欧米諸存することから、特に雌馬では洗浄と薬物塗布だ

国ではサラブレットでの発生はほとんど認められけでは T. equigenitalis をこの保菌部位から完全にないものの、他の品種では毎年のように発生が認排除することが困難な場合がある。そのような場められている。

合には、雌馬では保菌部位である陰核洞の切除がT. equigenitalis の感染部位は、雌馬の子宮に限有効である。本病はワクチンによる予防は出来ず、局され、その他の器官への感染はなく発熱等の全感染馬・保菌馬の摘発と接触性伝播を防ぐための身症状も示さない。雄馬は保菌するが感染は起こ

予防措置が防疫上重要である。国内清浄化が達成らない。感染した雌馬は子宮内膜炎を発症して滲されたわが国は、海外からの侵入防止と蔓延防止

出液を流出し、受胎率の低下を起こす。滲出液中対策の継続が最重要である。

2

Ⅱ 疫 学
1．海外における流行の歴史と現況

2．国内における流行の歴史と現況

馬伝染性子宮炎が知られるようになったのはわが国で CEM の発生が確認されたのは、1980

1977 年 4 月に英国ニューマーケットで勃発した大年の北海道日高・胆振地方が最初である。しかし発生が最初である。この流行で、英国では 29 カ所

ながら、その後に行われた血清学的研究の成績は、の牧場で約 250 頭の繁殖用雌馬と 25 頭の種雄馬が1978 年にはすでに CEM 罹患馬が日本国内に存在

CEM に罹患し、本格的な繁殖シーズンを前にししたことを示唆している。本症の発生が最初に確て種付けの中止を含む厳しい措置がとられた。さ認された 1980 年には、緊急対策が実施され、日高らに同じ年に、アイルランド、フランス、オース

家畜保健衛生所管内だけで 308 頭の繁殖雌馬と 13

トラリアでも発生が報告され、ついで、ベルギー、頭の種雄馬から T. equigenitalis が分離された。こドイツ、イタリア、ユーゴスラビア、オランダ、の数字は英国のニューマーケットにおける最初のデンマーク、スウェーデン、米国、ブラジル、日発生時に匹敵するものであり、当時のわが国の関本など世界の主要馬産国のほとんどで本症の発生

係者の混乱が容易に想像できる。その後は家畜伝が確認された。このように本症がまたたく間に世染病予防法第 6 条および 51 条の適用、検査および界中に広がったことは、その伝播力の強さを認識

研究体制の整備などの措置により官民一体となっさせると同時に、1977 年より以前にこれらの国のた防疫対応がとられ、その結果 1980 年に 321 頭でいくつかにはすでに CEM が存在していたことを窺あった感染馬は徐々に減少して 1983 年にはいっわせた。そのことを裏付けるように、その後に行

たん 25 頭にまで減少した。ところが 1985 年に再われた多くの疫学調査の成績は 1975 年にフランス

び 212 頭と増加し 1989 年まで顕著な減少が認めらですでに本症の発生があったことを示唆している。

れなかった。その後再度減少して 1995 年には一

CEM のその後の発生状況は国によって様々であ旦 0 頭となったが、1996 年には 1 頭の種雄馬を介る。オーストラリアでは 1980 年を最後に国内でのしての流行が発生し、摘発頭数は 23 頭に増加し発生報告はなく、1985 年に正式に清浄化宣言が出た（図 1）。しかしながら、厳格な追跡調査の実施されている。米国では 1979 年以降発生は認められおよび DNA 検査法のひとつである PCR 検査の試ていなかったが、2006 年に再び確認されて以降、験的導入もあり、翌年には摘発頭数は著しく減少

現在でも散発的な発生が報告されている。ヨーロッ

した。1998 年には家畜伝染病予防法施行規則の改パにおいては、イギリス、フランス、ドイツ、イ

正により CEM は届出伝染病となり、また、馬防タリア、オランダ、スペイン、およびスウェーデ

疫検討会の専門会議が 1998 ～ 2001 年に開催され、ンなどで毎年のように発生が報告されており、清PCR 検査法が正式な診断法として認定された。さ浄化は未だなされてはいない。しかしながら、最らに、1998 年には CEM の本格的な保菌馬の摘発

近では以前のような大規模な流行は起こらず、多とその淘汰を目的とした CEM 清浄化対策推進事業

くはサラブレッド以外の馬における散発的な発生が開始され、摘発頭数は減少が続いた（表 1）。さもしくは地域的な流行に留まっている。

らに 2001 年から PCR による全頭検査が実施され、2005 年 6 月以降は全く摘発されなくなった。なお、2001 年にみられた摘発頭数の増加は、PCR 検査法
がすべての繁殖用軽種馬に初めて適用されたこと

3

により、検査感度が高まったことが影響したもの

られた結果、2010 年の馬防疫検討会本会議で清浄と考えられる。

化が確認された。また、この清浄化確認以降にもこれらの結果を受け、2008 年から開催された馬CEM の侵入防止および蔓延防止対策事業が継続さ

伝染性子宮炎清浄度評価専門会議において、学識れており、発生は確認されていない。

経験者による CEM 清浄性についての議論が重ね

350

321
300

250

⳦ศ㞳㝧ᛶ㢌ᩘ

212
200

150

100 96 96

100

70

58
50

0

35

25

33

24

36

19 23

11

23
0

7

5

0

1

11

4

2

1

1

0

0

0

0

0

0

0

0

1980 1981 1982 1983 1984 1985 1986 1987 1988 1989 1990 1991 1992 1993 1994 1995 1996 1997 1998 1999 2000 2001 2002 2003 2004 2005 2006 2007 2008 2009 2010 2011 2012 2013᳨ᰝᖺᗘ
䈜1987ᖺ䛻໭ᾏ㐨࿴✀17㢌䛻Ⓨ⏕䛜ㄆ䜑䜙䜜䛯௨እ䛿䚸䛩䜉䛶➇㉮㤿⏕⏘⏝䝃䝷䝤䝺䝑䝗䛷䛾Ⓨ⏕䛷䛒䜛䚹

図 1. 日 本国内で確認された馬伝染性子宮炎（CEM）の発生数

表1
西暦

CEM 清浄化プログラムの成績

2001

2002

2003

2004

2005

2006

2007

2008

2009

2010

411

412

389

351

331

305

281

282

311

269

登録繁殖雌馬頭数

12,411

12,276

11,499

11,13010,670

10,297

10,253

10,263

9,872

10,765

PCR 検査頭数

12,356

12,762

12,124

12,152

11,76912,65012,73812,261

12,305

11,796

PCR 陽性雄馬頭数

1

0

0

0

0

0

0

0

0

0

PCR 陽性雌馬頭数

10

4

2

1

1

0

0

0

0

0

登録種雄馬頭数4

Ⅲ 病原体と感染
1．病原体
本 病 の 原 因 菌 は Taylorella equigenitalis で あ る。（ 図 2）。
本菌は 1977 年の CEM が流行した際に Platt らによって初めて 分 離 さ れ、Taylor ら に よ っ て Haemophilus equigenitalisと 命 名 さ れ た。 そ の 後、 杉 本 ら に よ っ て 新 し い 属 で ある Taylorella の 設 定 と 当 属 へ の 移 行 が 行 わ れ、Taylorellaequigenitalis と命名された。現在、Taylorella 属には本菌と2001 年に新たな菌種として発表された後述の T. asinigenitalisの 2 種が含まれている。本菌の主な培養性状は以下の通りである。
本菌は、グラム陰性の桿菌で、固体培地で培養すると通常は球桿菌の形状をとるが（図 3）、時に多形性を示す。非運動性で芽胞を形成しない。微好気性条件（5 ～ 10％炭酸ガス含有）下で最も良く増殖するが、好気や嫌気条件下ではほとんど増殖しない。また、チョコレート寒天培地上では良く増殖するが、
図 2.

子 宮内膜に感染した T. equigenitalis の走査電子顕
微鏡像：子宮粘膜上皮細胞の微絨毛に付着している

図 3.

T.equigenitalis のグラム染色像：グラム陰性に染色された球桿菌が認められる

5

血液寒天培地での増殖は悪い。増殖には血液の添加が必要であるが、X およびⅤ因子の要求性はな
い。至適増殖温度は 35 ～ 37℃である。カタラーゼ
陽性、オキシダーゼ陽性、フォスファターゼ陽性、炭水化物から酸を産生しない。乾燥、加熱、直射
日光、酸などに弱く、50℃ 1 分の加熱、1 時間の日
光照射、pH3.0 での 5 分間放置で死滅する。多くの消毒薬や抗菌薬に対して高い感受性を示す。抗菌薬としてはペニシリン、アンピシリン、ペプチド系、テトラサイクリン系、ストレプトマイシン以
外のアミノ配糖体系などに高感受性である。スト
レプトマイシンに対しては感受性を示す株と耐性を示す株の両方が存在するが、これまでにわが国で分離された株は全てストレプトマイシン耐性株であった（図 4）。一方、現在、諸外国で分離され
図 5. T. equigenitalis の透過電子顕微鏡像：菌体周囲に線る株は、ストレプトマイシン感受性株が多い。本毛が確認される。

菌は、ウマ科の動物の子宮にのみ感染して病原性を示し、雄馬では感染せず無症状のまま保菌馬と本 菌 は、 世 界 各 国 で 分 離 さ れ て お り、 様 々 ななる。他の動物あるいは生殖器以外の部位に感染

DNA 型が存在していることが報告されている。国することはない。実験的にはマウス、ネコ、ウサギ、内の分離株は、これまで全て同一の DNA 型と考え

モルモットの子宮内で一定期間定着させることがられていたが、最近の全ゲノム解析を用いた研究可能であるが、自然感染例は報告されてない。

により、国内流行の初期から 3 系統に分かれていたことが明らかになった。また、本菌の病原因子についてはほとんどわかっていないが、莢膜の存
在と子宮粘膜上での線毛の発現が報告されており、本菌の付着因子と考えられている（図 5）。病原性に関わる酵素や毒素の報告はない。本菌の全ゲノ
ム配列は 2011 年に公表されており、今後の研究の進展による病原性の解明が期待される。

T. asinigenitalis は、1997 年 に ロ バ か ら 初 め て分離された。T. equigenitalis に近縁であり、2001
年に新しい菌種として発表された。本菌は、米国
や欧州で分離例が報告されているが、わが国では分離例はない。分離株の多くはロバ由来であるが、乳母馬や種雄馬からの分離例も報告されている。
実験的な子宮内への菌の投与により一部の株でT. equigenitalis と同様の症状を示したことが報告
図 4.

されているが、自然感染による発症例は報告され

ストレプトマイシン耐性株の薬剤感受性：ストレプトておらず、本菌の馬に対する病原性に関しては不マイシン（S）に耐性だが、アンピシリン（Pb）とカルベ

明の部分が多い。

ニシリン（Pcb）に強い感受性が認められる

6

2）雄馬

2．感染と保菌雄馬では、生殖器への感染は起こらず、保菌の1）雌馬みが認められる。CEM に感染しているあるいは

感染部位は子宮である。子宮内に侵入した菌は子保菌している雌馬と交配した種雄馬は、そのペニ宮粘膜上に付着し、急激に増殖する。病理組織学的

スに菌が付着して保菌されるが、臨床症状の発現には感染馬の子宮リンパ管内に菌が認められることや抗体価の上昇は認められない。ペニスにおけるもあるが、通常は粘膜上皮細胞上にとどまる。卵巣

保菌部位は尿道洞、亀頭窩、包皮襞内などである。

への感染も起こらない。子宮内では菌の増殖に伴っ雌馬の場合と同様、これらの部位のスメグマの中て大量の滲出液が産生され、膣、さらには体外へとで T. equigenitalis は長期間生存する。

排出される。本病の最初の流行時には、疼痛を伴う
大量の滲出液の排出が特徴的な臨床症状であったが、3．伝

近年の摘発例には、激しい症状や大量の滲出液の排播出を示す症例は認められなくなっている。感染した

T. equigenitalis は主に交配によって伝播する。

雌馬の受胎率は著しく低下する。感染増殖した菌は感染あるいは保菌している雌馬と交配することにやがて局所抗体の産生に伴って減少し始め、最終的

よって雄馬は保菌馬となる。さらにこのような保には子宮内から完全に消失する。消失までの期間は

菌種雄馬と交配した雌馬は感染して子宮炎を発症

馬によって異なるが、長い場合には 2 カ月間以上子し、回復後にはしばしば保菌馬となる。保菌種雄

宮内から検出された例もある。また、稀ではあるが馬と交配した雌馬の中には、子宮炎を発症せずに本菌が流産胎子から分離された例も報告されている。

そのまま保菌馬となるものもある。保菌馬が出産

一方、本菌は子宮内から消失しても外部生殖器の恥した際に保菌部位から新生子の外部生殖器への菌垢（スメグマ）中に長く生存するため、長期間にわの付着が起こり、やがて成長した子馬が保菌馬とたり保菌する馬が認められる。このような保菌馬がして他馬への感染源となった例も報告されている。

本疾病の清浄化を妨げる最大の原因となる。雌馬にまた、感染馬の滲出液に汚染された馬体や敷料なおける主な保菌部位は陰核であり、特に陰核洞と陰どは、本病の間接的な伝播の原因となる。一方、核窩に溜まるスメグマが本菌の保菌に重要な役割を雌馬や種雄馬の外部生殖器に接触する獣医師や治果たしていると考えられる。実験感染においては、

療器材、馬取り扱い者や保定器具などによる伝播

子宮内から菌が消失した後も陰核からは 9 カ月以上も起こる。本病の最初の流行時には交配による直にわたって菌が分離され続けることが確認されてお接伝播以外にも、これらを介して間接的に伝播しり（表 2）、野外では 7 年間保菌していた例もある。

た例が相当数あった。また、軽種馬以外では実施

子宮粘膜に感染した菌は馬の免疫系を刺激し、血液されることも多い人工授精においては、保菌種雄

中の抗体および子宮粘膜上の IgA 抗体の産生をもた馬から採取された精液が菌に汚染され、その精液らす。一方、陰核に保菌された状態では免疫刺激はを注入した雌馬が感染することもある。

まったくなく、抗体の上昇や維持も認められない。

表2

馬伝染性子宮炎の感染と保菌：実験感染馬の長期観察例

菌接種後日数

1 週間

2 週間

1 ヶ月

3 ヶ月

6 ヶ月

9 ヶ月

臨床症状

＋＋

−

−

−

−

−

子宮頸管からの菌分離

＋＋＋

＋＋

＋

−

−

−

陰核からの菌分離

＋＋

＋＋

＋＋＋

＋＋

＋＋

＋＋＋

血清中の抗体

＋＋

＋＋＋

＋＋

−

−

−

7

Ⅳ 臨床症状と診断法
2）雄馬

1．臨床症状雄馬は保菌のみを起こし感染しないため臨床症

1）雌馬状も示さない。しかし、サラブレッドでは 1 頭の本病に罹患した雌馬は 1 ～ 14 日の潜伏期間を種雄馬が多くの雌馬と交配を行うことから、防疫経て子宮内膜炎を発症し、不受胎、滲出液の排出、上は保菌馬の摘発や治療が雌馬以上に重要である。

子宮頚管炎、膣炎、早期発情の繰り返しなどの臨床症状を示す。通常は発熱などの全身症状を示さ

2．臨床病理学的診断法ない。滲出液は、臭気に乏しく灰白色で、子宮内に貯留していたものが子宮頚管から膣に排出され、臨床症状が認められる馬の子宮頚管や子宮内膜症状の激しいものでは間欠的に陰門部から外部へのスワブあるいは滲出液を採取し、塗沫標本を作流出する。このような症状は初期の流行時によく製する。ギムザ染色やグラム染色を施すと滲出液見られ、本病の特徴的臨床症状とされた（図 6）。

中に多数の好中球に混じって少数の剥離上皮細胞、一方、近年の発生例ではこのような激しい症状をリンパ球、単球が認められる。また、これらの細示すものはほとんどなく滲出液の排出をほとんど胞の他にグラム陰性の球桿菌ないし短桿菌がみと認めないまま不受胎を繰り返す例も多い。さらにめられ、好中球に貧食されている像がみられるこは感染せずに保菌のみ起こすこともあり、この様ともある（図 7）。ただし、他の細菌性子宮内膜炎

な保菌馬は臨床症状を示さないので診断が難しい。

においても同様の所見が認められることがあるた

図 6.

CEM の臨床症状：牝馬の外陰部から流出する大量の滲出液

8

め、塗沫検査だけで本病を診断するのは困難である。直腸検査では子宮頚管の軟化や子宮の腫大が認められることがある。また、微弱発情を繰り返す症例では小さな複数の卵胞を有する萎縮卵巣を呈することもある。

3．病原学的診断法
1）採材法
菌分離用ならびに菌 DNA 検出用の検体の採材
は、臨床症状が認められる雌馬の場合には子宮頚管から滅菌綿棒を用いてスワブを採取する（図 8）。
滲出液の流出がある場合には滲出液を検体として利用できるが、この場合でも雑菌による汚染を防ぐために出来るだけ子宮外口付近から採材する。
子宮頚管からの採材法は以下の通りである。
まず鉗子など細長い器具の先に綿棒を固定する。
次に保定した雌馬の外陰部を膣鏡で開き、綿棒を子宮頚管内に挿入する。この時、綿球が外陰部や膣に触れて雑菌の汚染を受けないよう注意する。
発情期あるいは感染があれば子宮頚管は弛緩して

図 7.

滲出液のギムザ染色塗抹標本：標本中に多数認められる好中球の中にはグラム陰性菌を貪食している像が認められる。

図 8.

子宮頸管からの採材法：膣鏡で外陰部を開き、鉗子で挟んだ綿棒を子宮頸管まで挿入する

9

おり、綿棒の挿入は容易である。保菌馬検査のたものを使う。菌が付着する可能性のある器具を再めの採材は、雌馬では陰核の陰核窩および陰核洞

使用する場合は、必ず使用後に滅菌もしくは十分から行う（図 9）。保定した雌馬の陰唇を指で開いな消毒を行う。採材した綿棒は直ちに輸送用培地て陰核亀頭を突出させ、陰核窩に綿棒を挿入してに入れて冷暗状態に保ち、48 時間以内に検査室に内部のスメグマを採材する。陰核洞からは耳鼻科輸送する。菌分離用検体の輸送には、アミーズ培

もしくは小児科用の細い綿棒を用いて採材を行う。

地を用いる。アミーズ培地に含まれている活性炭

雄馬の採材はペニスから行う（図 10）。この場合、

は菌の発育阻害物質を吸着することから菌分離用

ペニスは勃起させておくのが望ましい。尿道洞おには適している。一方、PCR などの DNA 検査でよび包皮（図 11）の皺内のスメグマ、それに尿道は活性炭が検査の反応を阻害したり、DNA の抽出

口からスワブを採取する。必要により亀頭窩のス

効率を低下させることから活性炭を含まない培地

メグマおよび射精前液からも採取する。採材の際を用いる必要がある。採材は 1 頭につき 3 回行うに最も注意しなければならないのは、採材器具やことが望ましい。特に感染や保菌を疑う馬の検査、人の手を介した他馬への水平感染を防ぐことであ

あるいは菌が分離されて治療を行った後の菌の消る。採材者、採材助手、馬の保定者は必ず使い捨

失を確認するための検査などでは、1 週間程度の間ての手袋を着用し、器材も出来るだけ使い捨ての

隔をあけて 3 回の検査を行う必要がある。

陰核窩からの採取

正中陰核洞からの採取
図 9.

陰核からの採材法10尿道洞（尿道口の背側）からの採取

尿道口からの採取
図 10.

ペニスからの採材法

図 11.

包皮からの採材法

11

2）菌分離と同定法

報告されている。従って、通常は 3 ～ 4 日間隔で菌分離にはユーゴンチョコレート寒天培地

観察しながら 2 週間まで培養する。ECA 上の集落

（ECA）を用いる（表 3）。検体中に存在する雑菌の大きさは培養 4 日目に直径 1 ～ 2mm 程度で培養の発育を抑制するため、培地にはトリメトプリムを続けるとさらに大きさを増す。ECA 上に発育す（1µg/ml）、クリンダマイシン（5µg/ml）、アンホる典型的な集落は、形は円形・やや平坦な凸状・

テリシン B（5 ～ 15µg/ml）を添加して使用する。

辺縁円滑、色は灰白色～茶褐色、表面は滑らかでまた、上記の薬剤によって発育が阻害される株

メタリックな光沢がある。また、集落塊自体はまも認められることから、トリメタプリムとクリンとまりが強いが、培地へ粘着することはない。一ダマイシンを除いた培地も併用する。分離培養は方、このような典型的な集落以外にも半透明ある10％の炭酸ガス（CO2）存在下、37℃、2 週間まで

いは透明な集落を形成したり、光沢を失った集落行う。特に湿度を高める必要はない。逆にあまりを形成したり、あるいは長期培養しても非常に小高湿度にするとシャーレの皿と蓋の間に水滴がた

さな集落（直径 0.1mm）の形成に留まったりする

まり、これが接着剤の働きをして皿と蓋とを密着

集落変異株の存在が報告されている。また、そのさせてしまう事がある。このような状態ではシャーような変異株でなくても、分離培養時には様々なレの中が嫌気状態となり、菌は発育しないので注

非典型的な集落を形成することがある（図 12）。い意が必要である。集落は早ければ 3 ～ 4 日後にはずれの形態の集落も臭気を発せず、周囲の培地の肉眼で認められるようになる。しかしながら、採色を変化させない点では共通している。このよう

材後の時間が経過した検体では発育が遅いことがに、本菌は典型的な集落では分離培地上の特徴か

多く、培養 15 日目に初めて集落が確認された例もら予測がつくものの、非典型的な集落では他の菌

表3

ユーゴンチョコレート寒天培地の作り方䝴䞊䝂䞁ᐮኳᇵᆅ
⵨␃Ỉ

㻠㻜㻚㻡㼓
㻥㻜㻜㼙㼘

㻝㻝㻤䉝䛷㻝㻡ศ㛫⁛⳦

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12

図 12.

ユーゴンチョコレート寒天培地上に形成された T.equigenitalis の集落：培養 4 日目。
大小さまざまな大きさの集落が認められる。

表4との区別は困難である。従って分離培地上で、臭気がなく周囲の培地に変化がない集落の中で、はっアピザイムによる T.equigenitalisの菌体酵素活性きりと T. equigenitalis を否定できると思ったもの

Control−以外は疑わしい集落とみなして釣菌し同定する必アルカリフォスファターゼ＋

要がある。同定は PCR 検査等の DNA 検査もしく

エステラーゼ（C4）−は以下の方法によって行う。釣菌した集落を血液

エステラーゼリパーゼ（C8）−リパーゼ（C14）−

ロイシンアリルアミダーゼ＋

バリンアリルアミターゼ−

シスチンアリルアミダーゼ

−

トリプシン

−

α - キモトリプシン−

酸性フォスファターゼ＋

ナフトール -AS-BI-フォスフォヒドロラーゼ＋

α - ガラクトシダーゼ−

β - ガラクトシダーゼ−

β - グルクロニダーゼ−

α - グルコシダーゼ−

β - グルコシダーゼ−

N- アセチル - β - グルコサミニダーゼ−

α - マンノシダーゼ−

α - フコシダーゼ−

寒天培地と ECA に接種し、前者は好気で、後者は10％の炭酸ガス（CO2）存在下で 4 日間培養する。T.

equigenitalis は血液寒天に集落を形成せず、ECAに集落を形成する。この集落の形態を観察するとともにグラム染色、カタラーゼ試験、オキシダー
ゼ試験を行う。T. equigenitalis はグラム陰性の球桿菌で、カタラーゼ試験陽性、オキシダーゼ試験陽性である。分離培養時に非典型的な集落を形成していた株も、稀な集落変異株を除いては純培養することによって典型的な集落を形成するようになる。さらに紛らわしい場合には、アピザイム（日本ビオメリュー）を用いて菌体酵素活性の測定を行う。純培養した菌をキットの使用説明に従って、プレートに接種すれば 4 時間で成績が得られる（表4）。欧米では抗体を用いた同定キットも市販されている。また、公的機関から入手できる標準菌株を用いることで、同定の参考になる。

133）PCR 検査

2）綿棒を 1.5ml のマイクロチューブ（多検体の場

迅速かつ高感度で本症を診断できる方法として、

合はディープウェルマイクロプレートを使用）に入

こ れ ま で 様 々 な 種 類 の 菌 DNA 検 査 法（PCR 法、れた 100µl の滅菌蒸留水に懸濁し、100℃ 10 分間加

リアルタイム PCR 法、LAMP 法）が報告されてい熱する。3）15,000rpm で 1 分間遠心した後の上清る。国内では安斉らが開発した semi-nested PCR

を DNA サンプルとする。4）表 5 に示した条件で法が国が定める病性鑑定マニュアルに記載された

PCR 反応を 2 回実施し、2 回目に増幅された 238bp

方法として用いられている。PCR 検査に用いる検の DNA 断片を電気泳動で確認する（図 13）。なお、体は菌分離に用いるものと同様だが、輸送用培地

1 回目の PCR では 445bp の DNA 断片が増幅されは活性炭を含んでいないものが望ましい。PCR 検ている。なお、作業ミスによる偽陰性やコンタミ

査は以下の順に行う。

ネーションによる偽陽性などの検査失宜を防ぐた

1）採材は綿棒（陰核洞から採材する際は耳鼻め、同じ反応条件により異なるサイズのバンド約

咽喉科または小児科用の綿球の小さなものを使用

590bp が増幅されるように開発された反応陽性対照する）で行い、活性炭を含まない培地で輸送する。

を試験毎に使用することが望ましい。

表5馬伝染性子宮炎 semi-nested PCR 法の実施法䕿౑⏝䝥䝷䜲䝬䞊㻦 㻼㻝㻘㻌㻌㻡㻓㻙㻯㻯㻭㼀㼀㻭㻳㻭㻳㻳㻯㼀㻳㼀㼀㻭㼀㻯㻭㻭㼀㻯㻳㻳㻳㻭㻭㻭㻯㻯㻙㻟㻓㻌㻼㻞㻘㻌㻌㻡㻓㻙㻯㻯㻭㼀㻭㻯㻯㻳㻭㻭㻯㻯㻯㻭㻭㼀㻭㻯㻯㻭㻭㻳㻯㻭㻯㻭㻯㻭㻭㻳㻙㻟㻓㻌㻺㻞㻘㻌㻌㻡䇺㻙㻳㼀㻳㼀㻯㻭㼀㼀㻭㻭㻳㻳㼀㻳㼀㻳㼀㻭㼀㼀㼀㻳㻳㼀㻯㼀㻳㻳㼀㻳㻙㻟䇻䕿཯ᛂᾮ䛾⤌ᡂ㻝㼟㼠㻌㻼㻯㻾⏝㻦䐟 ⵨␃Ỉ䠄㻭㻛㻯䠅㻟㻠㻚㻡 䃛䡈䐠 㻝㻜㽢㻮㼡㼒㼒㼑㼞㻡㻌 䃛䡈䐡 㻰㻙㻺㼀㻼㻌㼙㼕㼤㻠㻌 䃛䡈䐢 㻼㼞㼕㼙㼑㼞㻦㻌㻼㻝䠄㻞㻜䃛㻹䠅㻜㻚㻡 䃛䡈䐣 㻼㼞㼕㼙㼑㼞㻦㻌㻺㻞 䠄㻞㻜䃛㻹䠅㻜㻚㻡 䃛䡈䐤 㼆㻌䇵㼀㼍㼝䠄㼀㼍㼗㼍㼞㼍䠅㻜㻚㻡㻌䃛䡈䐥 ᢳฟ㻰㻺㻭⁐ᾮ㻡㻌 䃛䡈ྜィ㻡㻜㻌㻌䃛䡈㻞㼚㼐 㻼㻯㻾⏝㻦䐟 ⵨␃Ỉ䠄㻭㻛㻯䠅䐠 㻝㻜㽢㻮㼡㼒㼒㼑㼞䐡 㻰㻙㻺㼀㻼㻌㼙㼕㼤䐢 㻼㼞㼕㼙㼑㼞㻦㻌㻼㻞 䠄㻞㻜䃛㻹䠅䐣 㻼㼞㼕㼙㼑㼞㻦㻌㻺㻞 䠄㻞㻜䃛㻹䠅䐤 㼆㻌䇵㼀㼍㼝 㻔㼀㼍㼗㼍㼞㼍㻕䐥 ᢳฟ㻰㻺㻭⁐ᾮྜィ཯ᛂ䝥䝻䜾䝷䝮㻥㻡䉝 㻟㼙㼕㼚㻌㻦㻌㼔㼛㼠㻌㼟㼠㼍㼞㼠

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14

PCR 検査は、特に保菌馬検査において菌分離よ

現しはじめ 3 週間後にピークとなる。感染後 6 ～りも数段高感度であるとともに、菌分離法では 1

10 週間後には低下してしまうことから、抗体の存週間以上かかる検査日数を 1 日に短縮することが在が確認された場合は、直近の感染を示すと考えできる。従って、わが国では、輸出入検査や軽種られる。しかしながら、雄馬は保菌のみ起こるた馬生産地で行われている繁殖供用前の検査など、

め抗体の上昇は認められず、雌馬でも保菌だけで大半の検査にこの PCR 法が用いられている。

感染せず抗体も上昇しないこともある。さらに血清診断には非特異的な反応も見られることから、血清学的診断の結果のみで本症の診断を行っては

4．血清学的診断法ならない。しかし、多検体を一度に処理できるというメリットから、流行時のスクリーニングや疫

血清診断法には、間接赤血球凝集反応、試験管学調査への利用価値は高い。

凝集反応、補体結合反応、ELISA などがある。感染馬の血中抗体は、感染後 7 日ごろから血中に出཯ᛂ㝧ᛶᑐ↷

T. equigenitalis≉␗ⓗቑᖜ⏘≀

図 13.

semi-nested PCR 法による T. equigenitalis の検出 T. equigenitalis では 238bp、反応陽性対
照は約 590bp の増幅産物が検出される。

15

2）病理組織学的所見

5．病理学的診断法

病理組織学的には子宮全域におよぶ急性子宮内1）部検所見

膜炎像を呈する。特に、粘膜固有層の水腫と好中肉眼的病変は子宮内膜と子宮頚管にほぼ限局し球およびリンパ球からなる炎症性細胞浸潤が顕著ている。子宮内膜の皺壁は水腫性となり、粘膜はである。子宮内膜上皮および腺上皮の細胞間隙は灰白色でやや粘稠な滲出液におおわれる。滲出液

しばしば拡張し、好中球の遊走を認める。子宮内は、急性例では重湯様の粘度の低い混濁液であり、膜表面および腺腔には多数の好中球を認める。固

経過が長引いた例では粘度を増し、淡黄色調を帯

有層には好中球の他、リンパ球やプラズマ細胞がびる。通常は卵巣、卵管、膣および膣前庭に病変多数浸潤し、ときには好酸球が認められる。そのは認められない。実験感染例では、急性期には子他、実験感染例では子宮内膜上皮の変性・壊死あ

宮内膜、子宮頚管、卵管、膣などの粘膜の著しいるいは過形成、子宮腺の拡張、固有層のリンパ管水腫が認められ、子宮および膣に滲出液の貯留をの拡張なども認められている（図 16）。通常、T.

認めた。また、子宮頚管および膣の粘膜はしばし

equigenitalis は子宮内膜表面（腺腔内）の粘液中ば充血が顕著で、ときに出血を認める例もあった

で増殖するので、病変は内膜にとどまる。しかし、（図 14 および図 15）。

ときに上皮間隙から侵入し、リンパ管のなかで増殖することがある。このような症例では病変は筋層におよぶ。

図 14.

急性期剖検例：子宮粘膜は水腫性。乳白色（重湯用）の粘稠性をもつ滲出液に被われている。

16

図 15.

亜急性期剖検例：子宮粘膜は軽度に充血し、不潔な茶褐色を呈する。子宮体部には乳白色の滲
出液が貯留している。子宮膣部にも充血が認められる。

図 16.

子宮粘膜面の病理組織所見：粘膜固有層には水腫と炎症細胞浸潤が顕著。浸潤細胞の大多数はリンパ球で、子宮粘膜表面や子宮腺腔には上皮細胞間隙から遊走する好中球が認められる。

17

Ⅴ 予防と治療
1．予であり、0.02％のクロルヘキシジンを使って陰核の防消毒を行う、この際、ブラシや綿棒などの器材をワクチンによる予防は出来ない。これまでの試用い、菌が潜んでいる陰核窩や陰核洞内のスメグ

作ワクチンが子宮内における感染抗体の十分な産マを完全に除去することが重要である。消毒後は、生を促さず、感染実験においても感染を十分に防消毒薬をよく洗い流すとともに、十分量の抗菌薬

ぐことが出来なかったことに加え、理論上ワクチ入り軟膏を陰核に塗り、表面を覆って菌の再付着

ンは保菌状態にある T. equigenitalis に効果が期待を防ぐ。これらの治療を 5 ～ 7 日間行った後、子できないことがその理由である。本病の予防には、

宮頚管および陰核の PCR 検査もしくは菌分離検査

感染馬及び保菌馬を交配に供さないことが最も重を行って、菌の消失を確認する。検査は治療終了後、要である。本症が常在する地域では、すべての繁無処置で 1 週間以上放置した後に始め、1 週間隔で殖雌馬、種雄馬および試情馬は交配に供する前に T.

3 回行う。通常は上述した治療により治癒するが、

equigenitalis が陰性であることを検査により確認し治療を行っても菌が検出される保菌馬も認められておかなければならない。また繁殖シーズン中はる。このような雌馬では、外科手術による陰核の早期発見とそれに対する迅速かつ的確な防疫対応

摘出・除去を行うか、馬そのものを淘汰する。

が重要である。臨床的に本病を疑う馬が認められⅱ）雄馬た場合は、ただちに検査を実施しなければならな
い。また陰性が確認されるまでは、当該馬はもち雄馬の治療も雌馬の陰核と同様の方法で陰茎垢ろん、その疫学関連馬も交配を中止し、感染の拡の中に潜伏している菌を完全に除去することを念

大を防ぐ必要がある。馬を取り扱う者や獣医師は頭に実施する。0.02％のクロルヘキシジン液を使っ

この間、馬同士の接触または人為的な伝播を防ぐてブラッシングを行い、包皮の襞、尿道洞、亀頭ための最大限の努力を払うことも大切である。

窩からスメグマを完全に除去する。その後、抗菌薬入り軟膏を塗布して菌の再付着を防ぐ。処置は2．治

陰茎を勃起させて実施するとよい。これらの治療

療を毎日 5 ～ 7 日間行い、治療終了後雌馬と同様の

1）洗浄と抗菌薬投与

スケジュールで検査を行い、菌が消失したことをⅰ）雌馬確かめる。本病の治療を行う際に注意しなければ本病に感染した雌馬は、子宮洗浄と子宮内へのならないことに、菌交代症がある。抗菌薬や消毒抗菌薬の投与および陰核からの除菌を行う。全身薬に対して抵抗性を示す菌による菌交代現象は雌の薬物投与は、通常は必要ない。子宮洗浄液は必

雄を問わず起こる危険性があり、特に莢膜 1、2、5

ず抗菌薬を含んだものを用いる。抗菌薬としては、型のクレブシェラと緑膿菌が、治療後の生殖器にペニシリン G やアンピシリンなどのペニシリン系

感染して CEM と類似の子宮炎の流行を起こすこと

抗生物質、ゲンタマイシン等のアミノ配糖体系抗が報告されている。このような疾病を防ぐために生物質（ストレプトマイシンを除く）、ポリミキシ

は、高濃度の治療薬や強すぎるブラッシングに注

ン B、ニトロフラゾンなどを併用する。子宮洗浄

意し、皮膚や粘膜に過剰な刺激を与えないことが後は子宮内に抗菌薬の水溶液を注入しておくとよ

重要である。また、治療後の生殖器の衛生管理もい。子宮洗浄と併せて陰核からの菌の除去が必要

大切である。

182）陰核洞切除手術
洗浄と抗菌薬の投与を十分に実施すれば、理論上は感染馬さらには保菌馬も治療が可能である。
しかしながら雌馬の場合は、陰核洞の深部に菌が存在するため、洗浄によってこれを除くことが困
難なことも多く、その場合は陰核洞切除手術が有効である。以下にその術式を紹介する。
1）馬を枠場保定して、鎮静処置を施し、尾を上方につり上げて固定する。2）陰核を 0.02％クロ
ルヘキシジン液で良く洗浄し、陰核洞内の除去困
難なもの以外の陰核のスメグマを完全に除去する。
3）細い探子を用いて正中および左右側陰核洞の深さ
および方向を予め測っておく。4）鼻捻子保定する。

図 17.

陰核洞切除手術：陰核亀頭へ局所麻酔薬の注入。

図 18.

陰核洞切除手術：切除部位

図 19.

陰核洞切除手術：切除後の陰核

5）陰核洞周囲の切開部位（横行小帯ヒダ、陰核亀頭等の組織）に、局所麻酔を注入する（図 17）。その際、陰核亀頭部への注入は大きな圧を必要とし疼痛を伴うので注意を要する。通常は 2％キシロカ
イン 10ml で十分である。6）2 本のアリス組織用ピンセットを用いて横行小帯ヒダを背測に持ち上げ、助手がそのまま押さえる。7）外科用メスを用いて陰核洞周囲に横行小帯ヒダを中に含む台形の切り込みを入れる（図 18）。8）切り込み部分をピンセッ
トで挟み。曲尖鋏を用いて横行小帯ヒダおよび陰核洞を含む組織を切り取る（図 19）。その際には 2）で予め測っておいた陰核洞の深さおよび方向を念頭におき陰核洞の取り残しがないようにすることが重要である。9）切除面にイソジンなどの消毒薬を塗布する。通常、出血は少量であり、傷口は約 2週間で治癒する。
3）淘汰
頑固な保菌馬の最終的な対処法は淘汰である。
治療による効果が認められない場合、淘汰が推奨
される。

19

おわりに
この度の改訂版は、平成 9 年に出版された「馬伝染性子宮炎」
をもとに、近年の疫学情報、病原体である T. equigenitalis に関する最新の知見、国内における清浄化に大きく貢献した遺伝子検査法に関する記述を主眼に加筆いたしました。
国内での清浄化が達成された馬伝染性子宮炎に対しては、これまでの感染馬や保菌馬の摘発を目的とした対策から、輸入検疫による海外からの侵入防止や生産地におけるモニタリングによる疫学監視と再侵入時の拡散防止を目的とした対策に変わっています。このような流れの中で、本冊子が獣医師、牧場関係者ならびに馬の衛生に携わる方々に少しでもお役に立つことができれば幸いです。
1980 年の国内での最初の流行から清浄化が達成された現在に至るまで、本病の対策に携わられた多くの獣医師、研究者の方々の貴重なデータ無くしては本冊子を作成することはできません。
この場をお借りし、諸先生方のご尽力に心より敬意を表すとともに、深く御礼申し上げます。

日本中央競馬会
馬事部防疫課
競走馬総合研究所栃木支所

20

刊行の馬感染症シリーズ
１．馬伝染性貧血診断のための寒天ゲル内沈降反応の術式

昭和 51 年

２．馬伝染性子宮炎

昭和 55 年

３．馬ウイルス性動脈炎

昭和 56 年

４．馬のサルモネラ症

昭和 56 年

５．ベネズエラ馬脳炎

昭和 57 年

６．アフリカ馬疫

昭和 58 年

７．馬鼻肺炎昭和 59 年

８．馬鼻肺炎ウイルス感染症のための寒天ゲル内沈降反応の術式と応用

昭和 59 年

９．馬伝染性貧血診断のための寒天ゲル内沈降反応の術式（第２版）

昭和 59 年10．馬のピロプラズマ病

昭和 61 年

11．馬の水胞性口炎

昭和 62 年

12．馬の寄生虫病

昭和 63 年

13．馬ウイルス性動脈炎（第２版）

平成 元 年14．馬のポトマック熱

平成 ２ 年

15．消毒法Ｑ＆Ａ

平成 ３ 年

16．馬トリパノゾーマ病

平成 ５ 年

17．馬インフルエンザ

平成 6 年18．馬の感染症

平成 6 年

19．腺疫

平成 8 年

20．子馬のロドコッカス感染症

平成 8 年

21．馬鼻肺炎（第２版）

平成 9 年

22．馬伝染性子宮炎（第２版）

平成 9 年

23．馬原虫性脊髄脳炎

平成 10 年

24．馬パラチフス

平成 10 年25．馬の日本脳炎

平成 10 年

26．馬ピロプラズマ病（第２版）

平成 11 年27．馬のゲタウイルス感染症

平成 11 年

28．馬ロタウイルス感染症

平成 12 年

29．馬ウイルス性動脈炎（第２版・補訂版）

平成 12 年30．馬伝染性貧血の診断術式（第３版）

平成 13 年31．馬の水胞性口炎（第２版）

平成 13 年32．馬の感染症（第２版）

平成 13 年

33．腺疫（第２版）

平成 14 年

34．馬原虫性脊髄脳炎（第２版）

平成 15 年35．馬のウエストナイルウイルス感染症

平成 15 年

36．馬の真菌症

平成 16 年37．馬の感染症（第３版）

平成 17 年

38．馬インフルエンザ（第２版）

平成 17 年

39．馬鼻肺炎（第３版）

平成 19 年

40．馬パラチフス（第２版）

平成 20 年

41．消毒法Ｑ＆Ａ（第１版・補訂版）

平成 20 年

42．馬ウイルス性動脈炎（第３版）

平成 21 年

43．馬伝染性貧血の診断術式（第３版・補訂版）

平成 22 年44．馬の寄生虫病（第１版・補訂版）

平成 22 年

45．アフリカ馬疫（第２版）

平成 23 年

46．馬のゲタウイルス感染症（第１版・補訂版）

平成 23 年

47．腺疫（第３版）

平成 23 年

48．馬ピロプラズマ病（第３版）

平成 24 年

49．馬インフルエンザ（第３版）

平成 24 年

50．消毒法 Q&A

平成 24 年

51．馬原虫性脊髄脳炎（第 2 版・補訂版）

平成 24 年