ラジオアイソトープ利用ガイドブック
─ Radioisotopes for Life Science Research ─

I

H

33

125

32

P

3

C

14

35

S

P
72-HB01-02

ラジオアイソトープ標識化合物の安全取扱い

2

3

はじめに

1896年にA. H. Becquerelにより放射能の現象が発見されて以来、ラジオアイソトープ（Radioisotope: 以降RI）は医学・薬学をはじめとして幅広い研究分野で応用されてきました。
RIは今日のライフサイエンスの研究に多大な貢献をもたらしてきた反面、人体や環境への影
響を懸念して、その使用や廃棄には法的な制約が設けられています。また、近年の科学技術の急速な進歩にともない、RIを使用した検出・測定技術から非RI（Non-RI）手法への変換も積極的に行われています。しかし、検出感度と測定精度の高さ、実験手法の容易さから、
引き続き多くの分野でRIは利用されています。
ライフサイエンス分野で利用されるRIは、リン酸基をもつ核酸の標識に32Pや33P、チオール基を持つアミノ酸残基を含むタンパク質の標識に35S、チロシン残基を含むタンパク質の標識に125Iが主に用いられていますが、これら以外にも3Hや14C、51Crが実験目的に応じて利用されています。いずれのRIも生体物質に直接取り込まれたり、RIからの放射線が人体や環境に大きな影響をもたらす可能性を持った同位元素です。誤った使用法は、使用者本人だけでなく共同使用者の健康に影響をおよぼし、実験の精度を落とします。RI実験を行うにあたっては、RIの特性を十分に理解し、適切に管理された実験環境のもとで正しく取り扱い、RI使用に関する法令を遵守することが求められています。
本書は、研究者の皆さまにRIの安全な取扱いと使用方法を十分理解していただくために作成いたしました。これからRI実験を始める研究者はもとより、RI実験を行う全ての研究者にも繰り返し参考にしていただけるよう、実験の準備段階からRIの基礎知識、安全な取り扱い、測定方法および実験例までをわかりやすく、かつ実践的にまとめました。本書がRI実験の参考書として皆さまのご研究に役立ちますよう、スタッフ一同、心から願っております。
最後になりますが、本書をまとめるにあたり、貴重なご意見をいただきました東京大学ア
イソトープ総合センター 巻出義紘 教授をはじめ、諸先生方に心から感謝を申し上げます。

GEヘルスケア バイオサイエンス株式会社

5Contents
第1章

−基礎編−

1-1 ラジオアイソトープの基礎 ...............................10

1-4

汚染と処理法 ...................................................22

1-2 ラジオアイソトープの取扱い ...........................14

1-5

除染の方法 .......................................................23

1-3 RIの検出法 ........................................................18

1-6

しゃへい材の種類と効果 .................................24

1-7

RI取扱い10か条の鉄則.....................................251-8標識化合物の使用にかかわる法令 ...................26

1-3-1

LSCによる放射能量測定..............................18

1-3-2

写真による検出：オートラジオグラム ........20

1-3-3

イメージアナライザーによる検出と解析 ....20

第2章

−実験編−

計画から実験まで .....................................................28

2-4 Iodine-125

2-1 Phosphorus-32
2-1-1

核酸の標識法................................................30

2-1-2

プロトコール................................................32

2-4-1

125

2-4-2

プロトコール................................................44
クロラミン−T法によるタンパク質標識 ..44
レセプターアッセイ .................................46

ランダムプライマー法..............................32
末端標識法................................................34

2-5 Hydrogen-3（Tritium）
2-5-1

2-2 Phosphorus-33
2-2-1

プロトコール................................................48
細胞増殖の測定.........................................48

プロトコール................................................36

レセプターの解析 .....................................50

マクロアレイによる遺伝子発現のプロファイリング ...............36

2-6 Carbon-14
2-6-1

2-3 Sulphur-35
2-3-1

I標識 .........................................................42

プロトコール................................................52

プロトコール................................................38
in vitro Translation ....................................38

CATアッセイによる細胞の標識................................................40[14C]標識 2DGを用いる

プロモーター活性の検討 ..........................52
局所脳グルコース利用率の測定 ...............54

2-7 Chromium-51
2-7-1

プロトコール................................................56
細胞傷害性試験.........................................56

第3章−データ集−

3-1 DNA／RNA .......................................................58
3-2 バッファー／溶液の調製法 ...............................60
3-3 標識化合物関連データ ......................................61

本書に記載されている※印製品のトレードマークおよび製品販売会社については、63ページをご参照ください。

7

−基礎編−

1-1 ラジオアイソトープの基礎 ........................................................10
1-2 ラジオアイソトープの取扱い .....................................................14
1-3 RIの検出法..................................................................................18
1-3-1 LSCによる放射能量測定 ......................................................................18
1-3-2 写真による検出：オートラジオグラム.................................................20
1-3-3 イメージアナライザーによる検出と解析 .............................................20

1-4 汚染と処理法 ..............................................................................22
1-5 除染の方法..................................................................................23
1-6 しゃへい材の種類と効果 ............................................................24
1-7 RI取扱い10か条の鉄則 ...............................................................25
1-8 標識化合物の使用にかかわる法令..............................................26

9

chapter.1

第1章

1-1. ラジオアイソトープ（RI）の基礎
ラジオアイソトープ（Radioisotope；放射性同位体または放射性同位元素）
原子は、原子核と、その周囲の軌道をまわる電子から電子

できています。さらに原子核は、陽子と中性子からできています。
原子核の種類は、陽子の数と中性子の数、およびエネ

軌道

質量数

陽子 中性子（陽子+中性子の数）ルギー状態できまり、これを核種とよびます。

14
6

C

元素記号

原子番号

陽子の数が原子番号を表し、陽子と中性子の数の和が原子核（陽子の数）

質量数になります。
図1-2：放射性核種の例（原子番号は省略可能です）

図1-1：炭素原子の模式図

陽子の個数が同じで中性子の個数が異なる原子、すなわち原子番号が同じで質量数が異なる原子をアイ

電子
陽子

ソトープ（同位体または同位元素）とよびます。

中性子

アイソトープのうち、放射線をだして他の核種（娘核種）にかわるものがラジオアイソトープ（RI ＊）です。
水素では3種類のアイソトープのうち、トリチウムだ
けがRIです。
＊

RadioisotopeをRIと略記するのは日本でのみです。英語では決して略さずにRadioisotope(s)と記載しますが、本書では略称として国内で通用している ‘RI’

1

H

2

H

3

水素

重水素

三重水素
（トリチウム）H

図1-3：アイソトープの用語を使用します。

放射線の種類α（アルファ）線
原子核から飛び出したヘリウム原子核（陽子2個、中α線

性子2個から成る）
β線

β（ベータ）線
原子核から放出された電子

γ線

γ（ガンマ）線
紙

原子核内から放出された電磁波

アクリル板

図1-4：放射線の透過力

RIの製造法

生成核反応

ラジオアイソトープは自然界にも存在しますが、原子

RI原子核

N

炉やサイクロトロンなどで人工的に作り出されたもの

N（中性子）

が研究などに用いられています。

NP
中性子の照射で陽子が放出される

P（陽子）

窒素 14
14
7

N

図1-5：炭素14の生成核反応

10

炭素 14
14
6

C

鉛板

参考資料
RI核種

原子番号
水

素

アイソトープの例

1

1

2

12

3

ラジオアイソトープ（半減期）
3

H、 H、 H

H（12年）

炭

素

6

11

リ

ン

15

31

P、32P、33P

32

P（14日）、33P（25日）

硫

黄

16

32

S、33S、34S、35S、36S

35

S（88日）

53

125

ヨウ素

C、 C、 C、 C

11

C（20分）、14C（5730年）

I、

13

127

I、

14

131

125

I（59日）、131I（8日）

I

表1-1：アイソトープの例
各核種または他の核種について詳細を調べるには、Lawrence Berkeley National LaboratoryのTable of Isotopes（http://ie.lbl.gov/toi.html）などを参考にしてください。

α壊変

α線は重い原子核（ウランやアメリシウム、ラジウムなど）から飛び出した高速のヘリウム原子核です。α線が放出されると、もとの原子核よりも陽子、中性子がそれぞれ2個ずつ減少した原子核になります。このような壊変をα壊変とよびます。原子核反応式では次の例のように表現します。
4
226
222
88 Ra→ 86 Rn+ 2 He

ライフサイエンスの研究ではα線を放出する核種を使用することはほとんどありません。しかし、身近なところでα線放出核種は使用されています。
（たとえば煙感知器には少量のアメリシウム-241
を用いているものがあります）。

β壊変

β線は原子核から飛び出した高速の電子（electron）です。β線が放出されると、もとの原子核よりも陽子が1個多く、中性子が1個少ない原子核になります。このような壊変をβ壊変とよびます。
また、原子核内の1個の陽子が中性子に変化し、高速の陽電子（positron）が飛び出す壊変の形式があります。これをβ+壊変と表現します。β+線が放出されるともとの原子核よりも陽子が1個少なく、中性子が1個多い原子核になります。このような壊変をβ+壊変とよびます。β+壊変に対しβ壊変をβ-壊変と表記することもあります。
β–（β）線 ：146 C（中性子8；陽子6） → 147 N（中性子7；陽子7）＋電子：116 C（中性子5；陽子6） → 115 B（中性子6；陽子5）＋陽電子

β+線

β線放出核種は身近なところでは夜光塗料や、蛍光灯のグロー放電管などに使用されています。

γ線

壊変が起こったあとの原子核は励起状態にあることが多く、通常はきわめて短い時間内に余分のエネルギーを電磁波として放出し、安定な状態になります。この原子核内より放出される電磁波をγ線とよびます。
X線はγ線と性質は同じですが、原子核外の軌道電子の状態変化により放出される電磁波です。たとえばβ壊変の1種である軌道電子捕獲（electron caputure；EC）という壊変形式では、原子核内の1個の陽子が中性子に変化するとき、軌道電子を1個取込みますが、このときできた空孔が外側の軌
道電子によって埋められるときX線が放出されます。この他、X線の放出には内部転換（Internal
Conversion;IC）があります。

生成核反応

生成核反応

RI核種

壊変様式

6

Li（ｎ、α）

3

βHelium-314βNitrogen-14

H

娘核種

N（ｎ、ｐ）

14

32

S（ｎ、ｐ）

32

P

βSulphur＊-32

35

Cl（ｎ、ｐ）

35

S

β

Chlorine-35

Xe（ｎ、γ）で生成するXe（半減期17時間）のEC壊変

125

EC

Tellurium-125

124

C

I

125

表1-2：よく使われるRIの生成核反応の例

生成核反応は括弧内の左側に入射粒子を、右側に放出粒子を標記します。
＊

硫黄の英語表記はSulphur（英）とSulfur（米）がありますが、本書ではSulphurを用いています。

11

放射能および放射性物質の量をあらわす単位
原子核が放射線を出して他の種類の原子核に変わる性質を放射能とよび、その現象を壊変とよびます。また放射能という言葉はこの性質の大きさを表すのにも使われます。単位は壊変毎秒（1秒あたりの壊変数、disintegration per second; dps）、
これをSI単位ではベクレル（Bq）であらわします。以前使用されたキュリー（Ci）はSI単位ではありませんが、現在でもよく使用されています（RIの販売も、Ci単位で区切りのよい量となっています）。

1 Bq＝1壊変毎秒（dps）＝2.7×10-11Ci
核種

3

H

14

C

35

S

33

P

32

P

125

壊変形式

β

β

β

β

β

EC

EC

最大β線エネルギー（MeV）

0.0186

0.156

0.167

0.248

1.709

半減期

12.3 年5730 年

87.5 日25.3 日14.3 日59.4 日27.7 日最大比放射能9.6 Ci/mg

4.4 mCi/mg

43 Ci/mg

156 Ci/mg

285 Ci/mg

14.2 Ci/mg

92.2 Ci/mg

空気中

6

240

260

490

7900

—

—

水中

0.006

0.28

0.32

0.6

7.6

β線の最大飛程
（mm）

51

I

Cr

有効なしゃへい材と厚さ

特に必要なし1 cm厚アクリル板 1 cm厚アクリル板 1 cm厚アクリル板 1 cm厚アクリル板 0.02 mm厚鉛で半減 3 mm厚鉛板で半減（3 mm厚でも十分） （3 mm厚でも十分） （3 mm厚でも十分） （多量に扱う場合は （1.2cm厚の鉛入り
制動放射線のアクリル板でもしゃへいも必要）
よい）

実験試料の測定

LSC（液体シンチレーションカウンタ）

LSC

汚染の検査

スミア法を行い、 GM管式サーベイ
LSCでモニタする メータ（サーベイメータ
ではモニタ
できない）

LSC

LSC

LSC
（チェレンコフ光の測定も可能）

GM管式サーベイ
メータ

GM管式サーベイ
メータ

GM管式サーベイ
メータ

γまたは
X線検出器

γまたは
X線検出器

125

γ線用
シンチレーション
サーベイメータIγ線用
シンチレーション
サーベイメータ

表1-3：ライフサイエンス分野でよく使用される核種の物理特性と取扱い法＊

エネルギーの基本的単位はジュール（J）ですが、放射線のエネルギーを表すのによく用いられる単位に電子ボルト（electron volt、eV）があります。

電子が1ボルトの電圧で加速されて得る運動エネルギーを1eVと定義し、次のように表されます。
1 eV＝1.60×10-19 J
1 MeV（1メガ電子ボルト）は1 eVの106倍を表します。

線量
物質や生物に対する放射線の影響を評価するために、3つの線量とその単位が定義されています。
SI単位名

記号

定義

旧単位

SI単位と旧単位の関係

照射線量

γ (X) 線が空気をどれだけ電離できるかをあらわす

クーロン毎
キログラム

C/kg

空気1 kg中に1 クーロン（C）のイオンを作るγ (X) 線の量

レントゲン（R）

1 C/kg = 3876 R

吸収線量

放射線のエネルギーがどれだけ物質に吸収されたかをあらわす

グレイ

Gy

1 kgあたり1 ジュールのエネルギーの吸収があるときの線量ラド(rad)1 Gy = 100 rad

実効線量

人体への影響がどのくらいかを
あらわす

シーベルト

Sv

Σ吸収線量×放射線荷重係数＊1×組織荷重係数＊2

レム（rem）

1 Sv = 100 rem

表1-4：線量の種類＊1

放射線の種類とエネルギーにより人体への影響の程度が異なるために考慮される係数です。γ (X) 線、β線は1 で、中性子線は5 〜 20 、α線は20 を用います。

＊2

放射線の種類とエネルギーにより人体の各部位への影響の程度が異なるために考慮される係数です。肺の場合は0.12 のように、各部位によって決まっています。

12

参考資料
ベクレル／キュリー
ベクレル（Bq）は1896年にウランからの放射線を、キュリー（Ci）は1898年にラジウムを発見したそれぞれの研究者の名前から採られています。
1 Ciはラジウム1 gの放射能とほぼ同じです。
kBq
MBq
GBq

3.7

7.4

9.25 11.1 14.8 18.5

37

74

92.5

111

148

185

222

259

296

333

370

444

555

740

925

µCi
mCi
Ci

0.1

0.2

0.25

1

2

2.5

3

4

5

6

7

8

9

10

12

15

20

25

MBq
GBq
TBq

1.11 1.48 1.85 2.22 2.59 2.96 3.33

3.7

4.63 5.55

7.4

9.25 11.1 14.8 18.5 22.2 25.9 27.8 29.6 33.3

37

µCi
mCi
Ci

30

100

125

200

250

40

50

0.3

60

0.4

70

0.5

80

90

150

300

400

500

600

700

750

800

900 1000

表1-5：ベクレル／キュリー換算表

β線エネルギー
α壊変の場合には一定のエネルギーをもったα粒子（ヘリウムの原子核）が放出されるのに対し、β壊変では最大エネルギーEmax以下種々のエネルギーをもったβ粒子（電子）が放出されます。β
線スペクトルは固有の最大値（最大β線エネルギー）以下の連続スペクトルとなります。
核種の壊変の速度は外的条件などに影響されず、原子核にだけ依存する確率的現象です。半減期

半減期

は、常に原子核の数（あるいは放射能）が壊変して半分になるまでの時間のことです。

1

放
射
能
︵
相
対
値
︶

最初の放射能を1とする

1
2
1
4
1
8

時間
半減期

半減期

半減期

図1-6：半減期131-2. ラジオアイソトープの取扱い
RI標識化合物
放射性核種を含む化合物（RI標識化合物、ホットとも表現します）は、通常の化合物（非RI標識化合物、コールドとも表現します）と一部の原子がラジオアイソトープに変わっただけなので、各種反応、化学的挙動はほぼ同じであると考えられます。したがって、RI標識化合物は種々の実験においてトレーサー （追跡子）として、元素や化合物の挙動を追跡、解析するための有効な手段として利用されています。

RI標識化合物安全使用のための3原則（3C）Contain

放射性物質をできるだけ狭い空間にとじこめ、広がらないようにする

Confine利用する放射線、放射能の量を必要最小限にし、効果的に利用する

Control

放射性物質の購入、使用、廃棄などを適切に管理する

3Cは放射線管理の基本である放射線障害の防止を達成するために実行されるものです。10か条の鉄則（p.25参照）を基本
原則として理解し、計画の立案、実施を確実に行ってください。
・ 使用者自身の放射線障害の防止をはかる・ 周囲の人の放射線障害の防止をはかる・ 一般の人々の放射線障害の防止をはかる

RI標識化合物の分解とその抑制法
化合物の安定性は、ホットとコールドでは大きく異なります。ホットはコールドより分解しやすくなります。標識化合物を有効に利用するには、その特性を充分に理解して実験計画をたて、分解が起こる前に使用することが重要です。納品後のRI標識化合物は、添付の仕様書に記載されている最適な条件に従って保存してください。
分解様式

原因

抑制法

一次（内的）分解

放射性核種の壊変なし

一次（外的）分解

放射線による化合物分子の直接破壊

RI標識化合物分子の分散

二次分解

ラジカルなどとの相互作用

RI標識化合物分子の分散
低温保存
ラジカルスカベンジャーの添加

化学的および微生物による分解

熱力学的不安定性
保存環境の不適正

低温保存
環境の適正化

表1-6：RI標識化合物の分解様式と抑制法[35S] Cysteine

能あるいは放射能濃度を低くすると、放射線とRI標識化合物分子の衝突による分解の確率を下げることができます。16ページの表1-8に市販RI標識化合物の核種による一般的な放射能濃度を示しました。この放射能濃度のRI標識化合物は一般的に安定であると考えられています。
二次分解は低温保存により抑制できます。例として [35S] Cysteineの保存温度と分解の程度を示しました（図1-7）。-140℃で保存した場合はほとんど分解しません

100%

-140℃

90%

-80℃

Radiochemical purity

一次（外的）分解の抑制法として、標識化合物分子の分散化があります。比放射

60%

30%

が、-20℃では1週間で30 %以下まで放射化学的純度（p.16参照）が低下します。
二次分解は、また、放射線の作用によって生成するフリーラジカル類が集積したスプール（Spur）によっても起こります。したがって、ラジカルの生成を少なく

-20℃

1

2

3

4

5

Time (weeks)
図1-7：温度による分解の違いの例

するスカベンジャーを溶液に加えても分解を抑制することができます。スカベン
3

H化合物

製造後1-6ヶ月以内

14

C化合物

製造後3ヶ月-1年以内

表1-7に、それぞれの核種によって実験に使用できる、期間の目安をまとめました。

32

P化合物

製造後1-2週間以内

これはあくまでも一般的なものです。目的のRI標識化合物がどのくらいの期間使

35

S化合物

製造後2週間-2ヶ月以内

用可能かは各実験内容によって判断してください。この期間を過ぎたRI標識化合125

ジャーとしてはエタノールなどが用いられます。

物は、できるだけすみやかに正規の手順に従って廃棄してください。
14

I化合物

製造後2週間-1ヶ月以内

表1-7：標識化合物の使用期間の目安

参考資料
凍結方法に
よる分解の
違い

溶液を液体窒素で急速凍結した場合と、冷凍液体窒素での急速冷凍

冷凍庫での緩慢凍結

分子は分散したまま分子が凝集（クラスター）を形成する庫に入れてゆっくり凍結した場合では、図1-8のように分子の集まり方が異なり、緩慢な場
合 に は ク ラ ス タ ー を 形 成 し ま す 。
弱β線放出核種の場合、このクラスター内でエネルギーの吸収が生じて、分解を促進します。
液体窒素での急速凍結ができない場合、-20℃のフリーザーで保存するより、クラス
図1-8：クラスターの形成

ターを形成しない4℃のほうが安定です。

標識化合物
の分解

現在最も広く使用されているRI標識化合物、32P標識ヌクレオチドを例に説明します。
図1-9：d CTPの構造

NH2
H
N
O
HO

O

P

O

P

OH

O

P

OH

N

O

O
O CH2

OH

O

H

H

OH

H

H

H

[α-32P] dCTPの分解
図1-9のα位のPが32Pになっているものを[α-32P］dCTPと表わします。
《β壊変により32Pが32Sになる》
NH2
N
O

O

O

HO P

O P

O P

O

HO P

O P

OH

OH

OH

N

O

O CH2 O
H
H
OH
H

O
O

OH

H
N

S
OH

N

O
O CH2 O
H
H
H

H

H

OH H

OH H
32

図1-10：β壊変による
d CTPの分解

NH2O

H

Pが壊変すると32Sになります。原子価ではPは5、Sは6ですから、そのままの結合は維持できません。ヌクレオシド（塩基と糖部分）とリン酸部分は離れてしまい、DNAの基質にはなれません。
《β線エネルギーによる分子結合の切断》

NH2

NH2
H

H

N
O
HO

P
OH

O
O

P
OH

P

N

O

O
O

O CH2

O

O

H

OH

N

HO

OH

H

P
OH

O
O

P
OH

P
OH

O CH2

OH

O CH2

O

H

H

H
OH

P
OH

H
H

H

OH

H

NH2

H

H
N

O
HO

放出されたβ線が同一分子の結合を切断

O

H
H

放出されたβ線が分子の結合を切断

N

O

O
O

OH

N

O

O
O

NH2
N

O

P

H
H

HO

O
O

H

H
OH

P

O
O

P
OH

O CH2
OH

N

O

O
O

O

H

H

OH

H

H

H

図1-11：β線エネルギーによる分子結合の切断
32

Pのβ線エネルギーは、化合物の結合を切断します。化合物分子の集団の中で、切断される結合位置は特定できません。
そのためRI標識化合物が分解した場合に、分解されて生じるものは特定できず、いろいろな分解物の混合したものとなります。

15

RI標識化合物の選択法
論文などでメーカー名や製品コード番号まで指定されていれば同一製品を選択すれば良いのですが、そのようなケースはほとんどありません。必要なRI標識化合物の情報を読み取り、カタログから同一のものや適したものを選んでください。
新しい系では実験の目的や検出系により、核種、標識位置、比放射能、溶媒など最適なものを選択してください。
標識位置
酵素基質として使用する場合など、標識位置が重要です（図1-12）。ま

H H H

H H

H

た、標識位置によって抗体やレセプターとの親和性が変化する場合もあります（図1-13）。特に新規の実験を構築する場合、位置の選択は重要ですので、十分検討してください。

HOC C C H
1 2 3

HO C C H

H H H

＋

H C H

H H

H

CH4がどのくらいあるか確認するには3位のCが14Cでなければならない

比放射能（Specific Radioactivity）
化合物単位質量あたりどのくらいの放射能があるかを示す重要な値で

図1-12：標識位置

す（図1-14）。低比放射能の場合、標識体（●）にくらべ、非標識体（○）の割合が多くなります。一般的に比放射能が高いほうが検出しや
すくなりますので実験には便利です。しかし分解が早い、同一放射能結合できる

量中では化合物の分子数が少なくなるので大量に使わなければならな
い、などのデメリットもあります。
I

125

総放射能量（実験に必要な放射能量）
1本のチューブや実験系に、どのくらいRI標識化合物を加えるのか、どのくらいの数をこなすのかで必要総量は決まります。一定期間以降は125

使えなくなるので、実験期間内で使う必要最小量のパッケージを購入するようにしてください。

I

結合できない

図1-13：125Iの標識位置による抗体との結合親和性の変化

放射化学的純度（Radiochemical Purity）
あるRIが目的とする化合物の目的位置に正しく標識された化合物とし

低比放射能

高比放射能

てどのくらい存在するかを表します。RIを使用、選択する上で重要なポイントです。HPLC（高速液体クロマトグラフィー）や薄層などのク
ロマトグラフィー、電気泳動、酵素を使用したアッセイなどで分析されます。図1-15にL-［4,5-3H］LeucineのラジオHPLCでの分析例を示します。
図1-14：比放射能の模式図

溶媒RI標識化合物の安定性を優先するため、目的の実験には適さない溶媒
20

うか確認してください。RI標識化合物が実際に使用する実験系に適し18た状態で品質管理・販売されて問題なくそのまま使用できる製品もあ

16

ります。
放射能濃度（Radioactive Concentration）
一般的に市販のRI標識化合物は、安定性の高い放射能濃度で販売されています。化合物によりスカベンジャーや安定化剤を添加したり、溶液や凍結乾燥として販売されています。実験系に適しているか、適していないなら変更が可能か、検討が必要です。
[3H]化合物

1.85 MBq/ml（50 µCi/ml）[32P]ヌクレオチド（高濃度水溶液）

370 MBq/ml（10 mCi/ml）

14
12
10
8
6
4
2
0

37 MBq/ml（1 mCi/ml）[14C]化合物

Radioactive counts (×103 )に溶解されて販売されている場合があります。溶媒の交換が必要かど

5

10 15 20 25 30 35 40
Minutes from injection

図1-15：ラジオHPLCでの分析例

表1-8：市販RI標識化合物の一般的な放射能濃度

16

参考資料
RI標識化合物の標記法
RI標識化合物の標記の方法はいろいろあります。こCH2OCOR

こではChemical SocietyやAmerican Chemical

R = (CH2) 14CH3

CHOCOR O

Societyなどの雑誌で利用されている Square-

CH2brackets-preceding によるRI標識化合物の標記法を

O

P

O

N+ (CH3)3

O-

紹介します。

図1-16：L-3-Phosphatidylcholine,1,2-dipalmitoyl

RIは、標識されている物質の直前の括弧中に標記し
ます。

NH2

L-3-Phosphatidyl[N-methyl-14C]choline,1,2-dipalmitoyl
L-3-Phosphatidylcholine,1,2-di[1-14C]palmitoyl

N

N

N
O

アラビア数字、ギリシャ文字や接頭語で標識位置を示す場合はRIの標記の前におきます。

HO

14[8- C]Adenosine 5’-triphosphate

O

P

O

OH

P
OH

32

Adenosine 5’-[γ- P]triphosphate14[adenine-U- C ]Adenosine 5’-triphosphate

N

O
O

P
OH

O CH2

O

H

H

OH

H

H

H

図1-17：Adenosine 5'-triphosphate

特殊な表現として[U-14C]や、[G-3H]という標記の場合があります。UniformとGeneralの頭文字で、これらはその化合物中に均一に、または全体に標識核種があることを意味します。

比放射能と実験に使用する化合物量、全放射能量3種類の比放射能の [α- 32P]dCTP（放射能濃度370 MBq/ml、9.25 MBqパッケージ）を使用し、25 ngの鋳型DNAから標識プローブを作る場合には必要なRI総量と得られるプローブの比放射能との関係の例を以下に示します。（詳細は32ページをご覧ください）
比放射能（TBq/mmol）

220

110

30

必要なRI総量（MBq）

4.18

2.09

0.55

液量（µl）

11

5.6

1.5

標識回数

2

プローブの比放射能（cpm/µgDNA）

1×10

4
10

5×10

16
9

1.3×109

実験でどのくらいの検出感度が必要か、1回あたりのプローブの量、実験を何回行うかなどを考慮
し、無駄のない使用計画を立ててください。

溶媒の除去の方法（例）
乾燥窒素

RI標識化合物
図1-18：溶媒の除去
トルエン溶液、エタノール溶液あるいはエタノール水溶液などで販売されている不揮発性のRI標識化合物では、容器を30〜35℃の温水に浸し、溶液表面に乾燥窒素をゆるやかに吹きつけながら溶媒を飛ばします。揮発性のRI標識化合物ではこのような開放した状況での溶媒除去は絶対に行わないでください。

温浴17

1-3. RIの検出法
放射能は直接目に見えず、匂いもしません。放射線は高速の粒子や電磁波であり、物体に対して
1）電離・励起作用
2）発光作用3）フィルム感光作用などがあります。これらを利用して適当な装置や機器を用いることで私たちは放射線を検出することができます。ここでは、一般的に行われている3種のRI検出法について紹介します。

1-3-1. LSC（液体シンチレーションカウンタ）による
放射能量測定これはβ線放出RIを検出する代表的な方法です。有機溶媒と溶質（蛍光体）よりなる液体シンチレータ（シンチラント）に試料を加え第2溶質

ると、β線による有機溶媒のπ電子の励起がおこり、これが基底状N態に戻るときに高エネルギーの光子を生じます。この光子が蛍光

第1溶質

光
O

N

PM管

体に作用し発光しますので、光電子増倍管（PM管）で検出します。

O

光

N
O

第2溶質

CH3

第1
溶質

PM管

溶解分子

・ 現在良く使われている液体シンチレータ

β線
試料（14C, 3Hなど）

キシレン（トルエン）系シンチレータ：
計数効率が高いが親水性試料は測定できない
乳化シンチレータ：

同時計数回路含水量の高い試料でも計数効率が高い
スケーラー

LSCとサンプルにより、各放射性核種の計数効率は異なります。
ご使用のLSCの計数効率を確認してください。

図1-19：LSCの原理

LSCで測定して、予測されるカウント数と大きく異なるカウント数が得られることがあります。カウントが高い場合は化学ルミネ
センス、低い場合はクエンチングの影響を検討してください。
化学ルミネセンス（Chemiluminescence）
化学ルミネセンスは、試料の化学反応により生じます。可溶化剤

計数効率の目安

使用するLSCでの効率

30〜50%%＞80%%

ほぼ100%

%

3

H

14

35

C/ S

32

P

表1-9：計数効率の第四級アミン水酸化物などのアルカリ溶液や、過酸化物が混在しているときに良くみられ、以下の操作などで抑えます。
・ 溶液をpH 7以下にする
・ 加温により化学反応を早く終了させてから測定する
また、測定用バイアルを日光や紫外線にさらした場合、りん光の影響でカウントが異常に高くなります。この場合にはバイアルを数時間暗所に置くと影響が見られなくなります。
クエンチング（消光）クエンチングはβ線→発光→PM管での検出の各段階で起こります。発光前は酸素や化学クエンチング、発光後は色によるクエンチングが生じます。酸素や化学クエンチングを排除することが重要です。試料中にクエンチャになりうる物質を含まないようにする必要があります。また溶液中の溶存酸素量が多いとクエンチングの影響が大きくなるのですが、溶存酸素を除いても、一定時間空放置すると溶存酸素量が一定に戻ってしまう（平衡化）ので、ライフサイエンス分野の研究の場合にはそのまま測定することがほとんどです。
γ線の測定
125

Iのようなγ線放出核種はLSCでも効率よく測定できます。しかし、一般的には液体シンチレータを使用せずに測定でき

るγカウンタなどの、γ線専用の測定機器が用いられます。

18

参考資料
測定器とバイアル
LSC測定では、用いるバイアルの選択も重要です。バックグラウンドの問題、計数効率、有機溶
媒に対する耐性、容量、コストなどから、使いやすいバイアルを選択してください。

固体シンチレータ
液体シンチレーションカウンタ用の製品として、シリカビーズに蛍光体が入ったものが市販されています。これに少量（200 µl以下）の不揮発性の液体試料を吸収させ、乾燥後カウントします。
液体シンチレータを用いませんので、放射性廃棄物を減少できます。

チェレンコフ光
荷電粒子がある媒質（水、ポリエチレン等）中を移動する際、その媒質の電子の伝導速度より速く移動したとき（通常β線は光速に近い）、円すい状の波面の衝撃波が生じます。これがチェレン
コフ光です。水を媒質とした場合、チェレンコフ光を生じる電子のしきいエネルギーは0.263 MeVですので、これ以上の最大β線エネルギーをもつ核種で測定できます。測定はLSCを用いますが、
液体シンチレータを使用せずに測定できますので、試料の再使用や、放射性有機廃液を減少させることができます。

試料の可溶化 計数効率を高くするには、試料が液体シンチレータ中に均一に分散することが必要です。生体試料の多くは、そのままでは均質な溶液になりません。そのため可溶化剤で処理し、均質な試料にして測定します。
可溶化剤としては第4級アミン水酸化物が良く用いられます。ただし可溶化剤は色クエンチングや、
化学ルミネセンスの原因物質となりますので使用にあたって注意が必要です。

色クエンチャの除去
一般的に用いられる液体シンチレータの発光波長は350〜450 nmです。そのため、試料が黄色な
いし赤色に着色していると影響が大きく、青色ではあまり影響がありません。タンパク質を酸処理したり、FeCl3を使用した試料などは淡黄色になるので注意が必要です。またヘモグロビンやポルフィリンなどはごく微量でも影響が大きいので、脱色（漂白）操作が必要です。
過酸化水素や塩素水で試料を脱色させます。ただし、脱色剤自体さまざまなクエンチャとして作用するので、その後の処理が必要です。

クエンチング補正
クエンチングの影響を100 %取り除くのは、ほとんど不可能です。LSCの種類によって、さまざまなクエンチング補正のプログラムやシステムが組み込まれています。また、内部標準法、試料チャネル比法や外部標準法などのクエンチング補正法をおこなうこともできます（これらの詳細については南山堂発行、石川寛昭著「最新液体シンチレーション測定法」などを参考にしてください）。

19

1-3-2. 写真による検出：オートラジオグラム（Autoradiogram；Autoradiography）
放射線に感光作用があることから、古くから用いられている方法です。結果は像として得られ、形態、分布がわかります。
黒化度から量も推定可能です。
増感紙

プラスチック
ベース
乳剤

保護膜
H-3

C-14/ S-35/ P-33

P-32/ I-125

フィルム像
図1-20：オートラジオグラム

増感紙（Intensifying Screen）：エネルギーの強い核種（32Pや125I）の場合にエネルギーを反射させ増感させる目的で使用します。上図のように、反射により像が大きくなりますので解像度は下がります。
フィルム：最良の結果を得るために、フィルムをきちんと選んでください。一般的に感度が高いフィルムは解像度が低く、逆に解像度が高いフィルムは感度が低くなります。像は黒くなりますので、ベースが無色透明に近いほうが、コントラス
トが高くきれいな結果になります。
・ 乳剤が二層（図1-21の場合）：最も汎用されるタイプです。増感紙を使用する場合は必ずこのタイプをご使用ください。
・ 乳剤が一層：35Sなどの中β線核種で、高解像度を求める場合、バックグラウンドを下げるためには乳剤が一層のほうが適しています。露光面を確認して使用します。
・ 乳剤が露出：3Hの場合、保護膜をβ線が透過できません。乳剤（エマルジョン）をサンプル上に塗布する方法や、保護膜のない、乳剤が露出しているフィルムを使用しなければなりません。

1-3-3. イメージアナライザーによる検出と解析
最近では放射線のエネルギーを直接フィルム上に撮る方法にかわり、特別なスクリーン（プレート）を用いて放射線エネ
ルギーを潜像としてとらえ、それをレーザーでスキャンしてコンピュータ処理により検出および解析が一度にできるシステムが普及しています。

放射線がPhosphorScreenに到達すると
1) BaFBr:Eu2+結晶がイオン化され、潜在的イメージが形成される。
2) レーザースキャンを行うと、結晶から青色光
としてエネルギーが開放される。
3) 基底状態にもどる。
4) 青色光を捕集して、解析する。

Light
Collector

Radioactive Material

図1-21：イメージアナライザーの原理

オートラジオグラフィーにくらべ、非常に高感度で短時間、簡単な操作で結果を得られます。さらにオートラジオグラ
フィーにくらべダイナミックレンジが非常に広いこと、高解像度であることも有用な特徴です。

図1-22：STORMTM※システムとPhosphorScreen（右）

20

参考資料
オートラジオグラム
1896年にベクレルがウランからの放射線を発見したときも、原理的にはオートラジオグラムでした。現在までRIを利用した研究に欠かせないものになっています。

核種によるオートラジオグラフィーの選択
オートラジオグラムによる結果は、標識核種、使用量（単位面積あたりの放射能量）、露光時間な
どで変わってきます。実験系や目的に最適なフィルムを選択してください。
核
32

種

P

実験系

感度／解像度

サザン／ノーザンブロット

高感度プラーク／コロニーハイブリゲル中の方法
プレフラッシュフィルム＋増感紙を用い、-70℃露光

サンプル
DNAシークエンシング

高解像度

ダイレクトオートラジオグラフィー

高感度

プレフラッシュフィルムを用い、高解像度ダイレクトオートラジオグラフィー

14

C

タンパク質合成

33

P

細胞溶解液、ゲル中のサンプル

35

S

サザン／ノーザンブロット

フルオログラフィーを-70℃露光

ウェスタンブロット
DNAシークエンシング
In Situ ハイブリダイゼーション
薄層／ペーパークロマトグラム

高解像度

ダイレクトオートラジオグラフィー（フルオログラフィーにより、多少増感できる）

3

H

タンパク質合成

高感度

乳剤の保護膜のないフィルムを用いるか、
3

細胞溶解液、ゲル中のサンプル

H用のイメージアナライザー用プレート

In Situ ハイブリダイゼーション

高解像度

ダイレクトオートラジオグラフィー、ウェスタンブロット

高感度

プレフラッシュフィルム＋増感紙を用い、乳剤の保護膜のないフィルムを用いる
125I-70℃露光*プレフラッシュフィルム：簡単に表現すると、像が見える直前のレベルまで露光しておくことです。このようにしておくと、少量の光で露光するだけで像が現れるので、感度が上がることになります。
*-70℃露光：高感度の検出を行う場合には、露光を低温下で行ってください。

表1-10：オートラジオグラフィーの選択

フルオログラフィー（Fluorography：Fluorogram）
エネルギーの弱いβ線放出核種（3H、14C、33Pや35S）の増感法です。原理は液体シンチレータを用いてLSCで測定するのと同じで、蛍光体（PPOなど）でβ線エネルギーを光子に変換させたものを露光します。ゲルのような厚みがある試料の場合に、蛍光体がRIの近傍に十分集積されるので効果が高く、メンブランやTLCプレートのような薄い場合には効果が低くなります。
シート状の蛍光体で測定試料を包み込んでフルオログラフィーの効果を得るような市販品もあります。放射性廃液を減らすのに有用です。

定量

オートラジオグラフィーでもイメージアナライザーでも、定量のためには既知RI量との比較、較
正が必要です。段階的な放射能標準を用い、測定試料と同一の検出を行い、標準曲線を求めます。
試料を標準曲線と比較して定量します。

イメージアナライザー用プレート
イメージアナライザーに使用するプレートは、核種によって最適なものがあります。機器の取扱説明書に従い適切なものを使用してください。

図1-23：CATアッセイ
CATアッセイは、遺伝子の転写や転写安定性、翻訳効率を測定する目的で使用されます。STORMシステムでは、リポーター遺伝子アッセイに対し、イメージ作成から最終レポートまでの分析を自動化します。

21

1-4. 汚染と処理法
非密封のRIを使用した実験を行えば、危険性の大小はありますが、必ず汚染の可能性があります。RI実験に使用した全ての器具が広い意味で汚染したといえます。実験に使用した器具はすべて適切な除染処理を行ってください。その処理が不適切であると、実験台の上や周辺、実験室全体にまで汚染が広がることがあります。
正しい汚染の処理、除染法を身につけて、いつでも行えるようにしてください。
おそれない
きちんとした防御をして、モニタをしっかり行えば除染は安全にできます。
あわてない
あわててしまうと、拾い上げた汚染源を再度落としたり倒したりして、かえって汚染領域を広げてしまいますので、落着いて除染してください。
あなどらない手袋をしてろ紙で拭き取っているから大丈夫、とか、汚染範囲内の除染が終了して一安心！…ではありません。
手袋の汚染に気づかずにその手袋で触ったところが汚染していませんか？
汚染範囲外のモニタはしましたか？
注意深く除染してください。

しばしばおこる小規模汚染の原因
ピペットチップを落としてしまった
RI標識化合物を取り出すために使用したチップを落としたときは、周囲にも溶液が飛び散っていないか確認してください。確認しないで次にすすむと思わぬところにまで汚染が広上部についたRIがる原因となります。
取り出し／分注の際に溶液が泡立ち、それがはじけた試験管などの深い部分でおこると、外部飛散はなくても、ピペット本体が汚染した可能性があります。確認しないで次にすすむと、他に汚染が広がってしまうことがあります。ピ

泡ペット先端を汚染させないため、エアロゾルバリア付のチップなどを使用するのも良いでしょう。
キャップの開閉で上部についたRI標識化合物を飛散させてしまった
注意してもピペット先端がチューブ上部に触れてしまうことがあります。付いてしまった
溶液は遠心で下部に集めたり、拭き取ってください。そのままキャップをした場合、次に開くときに飛散して汚染を広げてしまいます。
開封時にはろ紙でキャップを覆い、飛散しないようにしてください。開封前には遠心し、溶液を底部に集めてください。
汚染した手袋を取ろうとして、他の部分を汚染させてしまった
手袋を引っ張って取ろうとして、手袋表面の汚染が飛散したり、汚染した手袋で触れた部分をさらに汚染させることがあります。ゆっくりと静かに取ってください。
スミア（拭き取り）法による汚染のモニタ
必ず手袋をして行ってください。
3

スミアろ紙

Hの場合には、この方法でないと確認できません。

LSC測定

22

1-5. 除染の方法
同じ実験室内にいる人に汚染が発生したことを知らせる
一人での処理を考えないでください。必ず他の人に知らせ、RI管理者に連絡してもらったり、除染を共同で行ったりしてください。
身体および衣服などへの汚染が無いことを確認するもし、衣服などに汚染が見つかったら、すみやかに脱いでください。実験
室内の広い場所に移動し、実験衣は汚染部分を確認しながらゆっくりと脱サーベイメータなどで汚染を確認するぎ、他に汚染が広がらないようビニール袋に入れてください。
皮膚についた場合、まず大量の水で洗い流す
水がはねて他の場所を汚染しないよう注意してください。
ぬるま湯で、手洗い用石鹸や中性洗剤を用いてよく洗ってください。
あまり強くこすって、皮膚表面を削ったり、傷をつけないよう注意してください。
3〜4回繰り返し、再度モニタします。
それでも落ちない場合、チタン酸ペースト（酸化チタンを0.01 N HClで溶いたもの、なければ練り歯磨きのような研磨剤のはいったもの）で注意深
く洗う（皮膚表面を多少削り取る）必要があります。

大量の水で洗い流す

効果の少ない方法を何十回も繰り返すのは無駄です。
適切なモニタで汚染区域を確認する
汚染した区域を明確に示すためテープなどで囲い、はっきり分かるようにしてください。

汚染区域を明確にする

実験衣や手袋、防護めがねなどの保護具をきちんとつけていることを確認してから行ってください。汚染の程度に応じて、例えば実験用のしゃへい板などを使用することも考えてください。
周辺に汚染がないか適切なモニタを使用して再確認する
大きな汚染物を取り除き、ビニール袋や廃棄用容器に入れる除染したあと再使用するのがよいか、そのまま廃棄するのがよいか考えてください。
こぼれた溶液をろ紙や吸収紙で拭き取る
手袋をきちんとしていることを再確認の上、ピンセットなどを用いてろ紙などで拭き取ってください。使用したろ紙などはビニール袋や廃棄容器に入れてください。
さらに溶液がなくなるまで拭き取ってから、モニタしてください。
＜除染が不十分＞
さらに水ぶきを行う。
↓（モニタ）
洗剤を使用して充分に拭き取る。
↓（モニタ）
酸・アルカリ溶液や市販の除染剤を使用する。

除染は安全が最優先されます。そして除染の効果、メリットと、放射性廃棄物の量がどのくらいになるのか考えてください。たとえば、床や壁の一部を非常に労力をかけてきれいに拭き取る場合と削り取って補修した場合を考えてみると、拭
取りには時間と労力がかかり廃棄物も多くなります。人件費を考えなかったとしても廃棄物の処理コストが増加します。
削り取って補修する場合、補修費用がかかりますが廃棄物量は少なくなります。
安全性、労力、廃棄物量やコストなどを判断して最適な方法を決めてください。とくにRI管理者と必ず相談してください。
23

1-6. しゃへい材の種類と効果
32

Pや125IなどのRI標識化合物を使用する場合には、被ばく線量をできるだけ低くするため、効果的なしゃへい材を適切に用いて実験を行ってください。32Pなどのβ線をしゃへいするにはアクリルなどのプラスチック、125Iの低エネルギーγ線をしゃへいするには鉛入りガラスや鉛入りアクリルを使用します。
32

Pのしゃへい32

Pなどの核種から放出されるβ線は、物質を通過する際に制動放射

線（制動X線）とよばれるX線を放出します。制動放射線の透過力はβ線より大きいのでこれを確実にしゃへいしなければなりません。この制動放射線の強さは、β線のエネルギーの強さと、通過する物質を構成する原子の原子番号の大きさに比例し増大します。アクリルのようなプラスチック類は原子番号の小さい物質からできています。この
アクリルでできたしゃへい体では発生する制動放射線が弱いため、実質しゃへい体でほぼ吸収されてしまいます。そのため、1 cm厚のアクリル板はβ線を効果的にしゃへいし、制動放射線の発生を抑えることができます。
32

Pのしゃへい効果

1 cm厚のアクリル製しゃへい板β-Safety Screen※を用いたしゃへい効

図1-24：β-Safety Screenを使用した実験

果の実験例をご紹介します。この例ではガラスバイアルに入れた407
MBqの32Pサンプルのカウントを、β-Safety Screenとの距離を変えて測定しています。

線源をスクリーンから10cm離して置く

この結果より、しゃへい材の効果がわかります。

線源
モニタ
スクリーン

スクリーンからモニタまでの距離（cm）

カウント（cps）

0

15

5

12

10

7

15

4

表1-11：β-Safety Screenのしゃへい効果
125

I のしゃへいγ線をしゃへいするためには、鉛のように大きな原子番号を有する物
質を用いるのが効果的です。しかし、通常大きな原子番号の物質は透明ではありません。125I などから放出される低エネルギーγ線の場合には鉛を入れたアクリルを用いることでこの問題を解決し、γ線を効
果的にしゃへいできる製品が販売されています。

125

Iのしゃへい効果

モニタを一定にしておき、74 MBqの125I のカウントを測定しました。
125

I用しゃへい板、125I -Safety Screen※（12 mm厚の鉛入りアクリル製）でしゃへいした場合としなかった場合のカウントをそれぞれ求め
図1-25：鉛入りアクリル製の125I試料保存箱ました。
スクリーンから線源までの距離（cm）

スクリーンあり（cps）

スクリーンなし
（cps）

10

8

振り切れ

20

4

振り切れ

30

3

5,000

40

2

4,000

50

1

2,200

125

表1-12：

I-Safety Screenのしゃへい効果

24

1-7. RI取扱い10か条の鉄則（10ゴールデンルール）
以下にRI標識化合物を使用した実験をRI管理区域内で行う場合の10か条の鉄則（10ゴールデンルール）を記載します。
放射線防御はいろいろな要素が絡み合って複雑ですが、少なくともこの10か条を理解して実践すると、RI標識化合物を安全に使用することができます。14ページに記載した安全使用のための3原則をふまえて、この10か条の鉄則を実践してください。なお、放射線障害防止法で認められた少量のRIを管理区域外に持ち出して使用する場合は、使用施設の放射線取扱主任者の指示に従ってください。
1. 危険性の認識および安全取扱い技術の習得
・必ず手袋など適切な保護具を着用する。口で吸い上げるピペットなどでRI標識化合物を取り扱わない。
・RI標識化合物は適切な条件で保存する。
・すべての容器には核種、化合物名、総放射能量、比放射能、使用期日や使用者などの必要事項を明記する。
・容器は確実に密閉する。

2. 取扱い時間を最小限にする実験計画の作成
・実験マニュアルを再確認し、充分なコールド実験を行い、RI標識化合物取扱いの時間、操作回数が最小限で行えるようにする。

3. 放射線源からの適切な距離
・放射線量は逆二乗の法則で、距離が2倍になると量は1/4になる。実験器具、容器の配置を検討して、最適な位置にRI標
識化合物を置くようにする。

4. 各放射線に適したしゃへい物の使用・厚さ1 cmのアクリル板は全てのβ線をしゃへいする。高エネルギーβ線については生じる制動放射線に注意する。
・γ線やX線には適切な厚さの鉛板または鉛入りアクリル板を使用する。

5. RI標識化合物使用区域の制限
・RI実験施設内で使用するのはもちろん、実験室内もさらにRI標識化合物を使用する区域を特定して、その他の区域と区別する。
・すべてのRI標識化合物の取扱いは換気されたフード内で行うことを基本にする。
・トレイおよび吸収材などを敷き、実験終了後または汚染除去時に確実に処理清掃できるようにしておく。

6. 適切な実験衣や防御用器具と外部被ばく線量計の装着
・実験中は必ず専用の実験衣、防護めがね、手袋などを着用する。
・ 実験中は個人外部被ばく線量計を指定された位置に装着する。

7. 汚染確認のため頻繁に実験区域周辺をモニタ・汚染があったら、指定された緊急措置を確実に行う。
1）付近にいるすべての人に知らせる。
2）汚染区域の立入りを制限する。
3）放射線管理担当者、放射線取扱主任者等に連絡し、指示をあおぐ。
4）実験者が中心となり除染を行う。
5）マニュアルにしたがって除染作業を行う。

8. RI実験施設の規則や安全な作業法の遵守
・飲食、喫煙、化粧その他RI標識化合物を体内に摂取する可能性のある行為は決して行わない。
・実験室内ではハンカチなどは使用せず、ペーパータオルを使用して随時廃棄する。

9. 放射性廃棄物を最小にする実験系の構築と、生じた廃棄物を適切に処理し長時間貯めない
・RI標識化合物は実験に必要な最少量を用いる。
・放射性廃棄物は規則に従って分類し、適切な廃棄処理をする。
・放射性廃棄物の量を確認して記録する。

10. 実験終了後、汚染有無の確認。手洗い、再度モニタ、汚染が無いことの確認
・実験施設から外部に出る場合は、必ず念入りにモニタする。
・汚染が見つかった場合には、すみやかに放射線管理担当者に連絡し、指示を受ける。

25

1-8. RI標識化合物の使用にかかわる法令
日本国内でRI標識化合物を使用する上で基本になる法律は「放射性同位元素等による放射線障害の防止に関する法律（昭和32年6月10日法律第167号）」（以下放射線障害防止法 ）です。

この法律の目的は第一条に述べられています。
放射性同位元素の取扱い、放射線発生装置の使用及び放射性同位元素によって汚染した物の取扱いを規制することにより、放射線障害を防止し、公共の安全を確保する。

RI標識化合物を取り扱うには、この放射線障害防止法および関連法令を理解し、遵守しなければなりませんが、RI使用者（放射線業務従事者）は、その施設の放射線取扱主任者の管理、監督のもと、正しく安全にRI標識化合物を使用することが求められています。
RI使用者は必ずその施設の規則および主任者の指示に従わなければなりません。
● 各施設によりその管理体制や方法、教育訓練の方法、内容や時期など異なりますが、概略は以下のようになります。
事前の準備

教育訓練の受講立ち入り前被ばく履歴調査
健康診断（立入り前健康診断）

申図1-26：RIマーク

請

管 理 区 域

RI使用者としての登録申請
実験計画書の提出

承（使 用 施 設）

認
RI使用者としての登録承認

使用開始（次年度以降、各年度ごとに）
教育訓練
健康診断
実験計画書の提出

許可なくして立入りを禁ずRI使用者は各施設で定められた内部規定「放射線障害予防規定」に従って行動しなければなりません。
RIの使用・保管・廃棄の記録はきちんと実施しなければなりません。その他にも詳細なルールがありますので、管理区域に立入る前に教育訓練を受講する義務があります。

26

−実験編−

計画から実験まで ...............................................................................28
2-1 Phosphorus-32
2-1-1 核酸の標識法 ........................................................................................30
2-1-2 プロトコール ........................................................................................32
ランダムプライマー法 ......................................................................32
末端標識法 ........................................................................................34

2-2 Phosphorus-33
2-2-1 プロトコール ........................................................................................36
マクロアレイによる遺伝子発現のプロファイリング .......................36

2-3 Sulphur-35
2-3-1 プロトコール ........................................................................................38
in vitro Translation.............................................................................38細胞の標識 ........................................................................................40

2-4 Iodine-125
2-4-1 125I標識 ..................................................................................................422-4-2 プロトコール ........................................................................................44
クロラミン−T法によるタンパク質標識...........................................44
レセプターアッセイ..........................................................................46

2-5 Hydrogen-3（Tritium）
2-5-1 プロトコール ........................................................................................48
細胞増殖の測定.....................................................................................48
レセプターの解析 .................................................................................50

2-6 Carbon-14
2-6-1 プロトコール ........................................................................................52
CATアッセイによるプロモーター活性の検討 ..................................52[14C]標識 2DGを用いる局所脳グルコース利用率の測定...................54

2-7 Chromium-51
2-7-1 プロトコール ........................................................................................56
細胞傷害性試験 .................................................................................56

chapter.2

第2章

計画から実験まで
RI標識化合物安全使用のための3原則（3C）Contain

放射性物質をできるだけ狭い空間にとじこめ、広がらないようにする

Confine利用する放射線、放射能の量を必要最小限にし、効果的に利用する

Control

放射性物質の購入、使用、廃棄などを適切に管理する

3Cは放射線管理の基本である放射線障害の防止を達成するために実行されるものです。10か条の鉄則（p.25参照）を基本
原則として理解し、計画の立案、実施を確実に行ってください。

実験計画
RI標識化合物を使用するといっても、取り立てて特別のことを考える必要はありません。どのような実験でも、最良の結果を得るためにはどうするのが良いか、それを安全にかつ効率よく行うためにはどうすべきかをいつも考えているはずです。RI標識化合物実験の場合には、安全に実験を行うために、取扱い時間を最小にして、実験台の上の器具・試薬の配置
やしゃへいなどについて再度注意深く見直します。効率良い実験のためには、操作ステップの見直し、廃棄物をできるだ
け少なくする方法を考えることが大切です。

コールドラン
事前にRI標識化合物を用いずに、全く同じ環境（機器の配置や使用する器具など）で実験操作を行ってみてください。これは大変重要なことです。実験操作に慣れている方も必ず行ってください。
・ 実験器具、試薬などの配置が安全にかつ使いやすい位置にあるか・ 必要なものがすべて揃っているか・ 実験操作に無理や無駄がないか
何か不都合が見つかれば、実験計画を立て直してください。

RI標識化合物の受け取り（検収）予定の入荷時刻を事前に確認して、その時刻には他の仕事に長時間拘束されていることがないようにスケジュールを組んでください。RI標識化合物の受け取りと確認（検収）は必ずすぐに実験者が行ってください。外容器に汚染がないことを確認した上で、ただちに適切な保管を行ってください。最適な保管方法と輸送形態が異なることがありますので、必ず添付書を確認してください。

管理と記録
RI標識化合物を受け取り後、所属施設の手順にしたがって記録してください。使用前および使用中、使用後の記録と管理も責任を持って実験者が行ってください。それぞれの所属施設で定められた記録帳票に必ず記録してください。

実験をはじめるにあたって安全に使用することを心がけてください。個人用被ばく線量計を決められた位置に装着してください。決して一人で実験を行わないでください。事前の準備がきちんとなされていることを確認してください。特に被ばく、汚染に対する予防措置が十分であることを確認してください。
10か条の鉄則（p.25参照）を守ってください。

28

RI標識化合物容器の開封・ よく換気されているフード内で開封してください。
・ 容器表面などに汚染がないことを必ず確認してください。
・ 溶液状のRI標識化合物は、開封前に遠心して溶液を容器の下部に集めてください。

原液の容器開封では、必ずピンセット等を使用して距離をとり、スミア法で拭き取り、
離れたところでGM管式サーベイメータ等で汚染がないかどうかを確認してください。

実験上の注意・ ゴムやプラスチック手袋、防護めがねなどの放射線防護用具をきちんと装着してください。
・ しゃへい材を適切な位置に設置してください。
・ RI溶液の入った容器の中を直接のぞかないでください。
・ 器具やチューブの取り扱いは、丁寧に落ち着いて行ってください。
・ 廃棄物入れをあらかじめきちんと設置してください。
・ 32P使用中はGMサーベイメータで、125I使用中は125I用シンチレーションサーベイメータで実験区域を常時モニタしてください。
・ 実験後はスミア法で汚染の無いことをモニタしてください。
・ 誤ってRIをこぼして汚染させても、決してあわてないでください。

C

14

32

サーベイメータで
モニタ

P

33

P

35

S

H

3

LSCで測定

I

125

廃棄と洗浄
廃棄と洗浄は十分注意しないと、周囲に汚染を広げてしまいます。あわてずあせらずゆっくりと行ってください。
・ 廃棄するものと洗浄するものを分けてください。
・ 決められた区分にしたがって廃棄してください。
・ 溶液など、廃棄する総放射能量を確実に記録してください。
・ 洗浄剤、洗浄方法が最適であることを確認してください。
・ はね返った水で周囲を汚染させないよう注意してください。
・ 使用した手袋でさわった部分を汚染させてしまうことがあります。汚染チェックが終わるまでは手袋で周囲をさわらないようにしてください。
・ 洗浄終了後は必ず周囲のモニタを行って、汚染がないことを確認してください。
・ 洗浄廃液の処理、廃棄を安全にかつ確実に行ってください。
・ 汚染が生じたら、23ページの方法にしたがって、除染してください。

実験終了
・ 実験に使用した器具の整理整頓をしてください。
・ RI実験室に持ち込んだものは、汚染のないことを確認して持ち出してください。
・ 実験台、身体の汚染のチェックを入念に行ってください。
・ 汚染などの問題がないことを確認してから実験室を退出してください。
・ 使用記録を必ず記入してください。
・ 個人用被ばく線量計の管理、保管を行ってください。

29

高エネルギーβ線
しゃへい：1 cm厚アクリル板
モニタ：GM管式サーベイメータ

半

減

14.3日

期

放出放射線

高エネルギーβ線（最大1.709 MeV）

汚染の検出

GM管式サーベイメータ
790 cm0.76 cm
1 ml中の1 MBqによる線量は、表面で210 mSv/時（21 rem/時）、
1 mの距離で2.5 µSv/時（0.25 mrem/時）
1 cm厚アクリル板がβ線を十分にしゃへいし、

空気中の最大飛程
水中の最大飛程線

量

しゃへい

制動放射線の発生も最小にする● ライフサイエンス研究で使用される核種の中では最大のβ線エネルギーがあります。不必要な被ばくを避けるよう、アクリル製ホルダーかケースも使用してください。

特記事項● 30 MBq（〜1 mCi）以上を扱う場合、指や手首に装着するタイプの線量計もあわせて使用してモニタしてください。
● 300 MBq（〜10 mCi）以上を扱う場合、アクリルの外側をさらに鉛で囲い、制動放射線をしゃへいする必要があります。

32

P

days/hours
0
4
8
12
16
20
24
28
32
36
40
44
48
52

Phosphorus-32 T1/2 : 14.3days
0
1.000
0.824
0.679
0.559
0.460
0.379
0.312
0.257
0.212
0.175
0.144
0.119
0.098
0.080

12
0.976
0.804
0.662
0.546
0.449
0.370
0.305
0.251
0.207
0.170
0.140
0.116
0.095
0.078

24
0.953
0.785
0.646
0.533
0.439
0.361
0.298
0.245
0.202
0.166
0.137
0.113
0.093
0.077

36
0.930
0.766
0.631
0.520
0.428
0.353
0.291
0.239
0.197
0.162
0.134
0.110
0.091
0.075

48
0.908
0.748
0.616
0.507
0.418
0.344
0.284
0.234
0.192
0.159
0.131
0.108
0.089
0.073

60
0.886
0.730
0.601
0.495
0.408
0.336
0.277
0.228
0.188
0.155
0.127
0.105
0.086
0.071

72
0.865
0.712
0.587
0.483
0.398
0.328
0.270
0.223
0.183
0.151
0.124
0.102
0.084
0.070

84
0.844
0.695
0.573
0.472
0.389
0.320
0.264
0.217
0.179
0.147
0.121
0.100
0.082
0.068

Phosphorus-32

2-1. Phosphorus-32

32

P

2-1-1. 核酸の標識法
膨大な量の遺伝情報の中から、目的とする遺伝子がどこにあるか、どのくらい存在、発現しているかなどを調べるために、
32

Pで標識した核酸プローブが用いられます。必要なRIの比放射能とRIを導入する鋳型核酸の位置により標識方法を選択します。一般的に行われている方法には下記の手法があります。
・ ランダムプライマー（プライマーエクステンション）法・ ニックトランスレーション法
・ PCR法・ 末端標識法
・ in vitro 転写法

ランダムプライマー法
6〜10 bp程度のランダムなプライマーDNAを一本鎖にしたDNAにアニールさせ、DNAポリメラーゼの5' → 3' 合成活性を利用して短鎖DNAを合成します。プライマー濃度の設定にもよりますが、標準的なプロトコールでは平均300 bpの長さのプローブが得られます。高比放射能のプローブを作成できます。
RI標識化合物は[α-32P]dATPなどのα位を標識したデオキシヌクレオチドを使用します。
二本鎖

5'

3'

3'

5'

・二本鎖DNAを熱変性して一本鎖にする

一本鎖

熱変性

3'

5'
プライマーを加える

5'・ランダム配列のプライマーDNAを加える

3'

3'

5'
DNA合成反応

5'

3'

3'

5'

・DNAポリメラーゼによる合成反応と同時に
RI標識ヌクレオチドが取り込まれる

図2-1：ランダムプライマー法による核酸標識

ニックトランスレーション法
DNase Iでニックを入れた二本鎖DNAに、DNAポリメラーゼ I を作用させ、3'→5'エキソヌクレアーゼ活性でDNAを分解す
ると同時に、DNAポリメラーゼ活性により 5'→3'方向へ新たにDNAを合成します。比較的長い（鋳型DNAに依存します）
DNAプローブを作成できます。RI標識化合物は[α-32P]dATPなどのα位を標識したデオキシヌクレオチドを使用します。
二本鎖

5'

3'

3'

5'

DNase I

ニックを入れる

5'

3'

3'

5'

DNAポリメラーゼ I

・微量のDNase Iで二本鎖DNAにニックを入れる

・DNAポリメラーゼ Iはニックを認識して
3'→5'方向にDNA鎖を消化する

DNA合成

5'

3'

3'

5'
DNA鎖の伸長

5'

3'

3'

5'

・DNAポリメラーゼ IのDNA鎖合成活性で、5'→3'方向に新たなDNA鎖が合成されると同時に、RI標識ヌクレオチドが取り込まれる

図2-2：ニックトランスレーション法による核酸標識

30

高エネルギーβ線
しゃへい：1 cm厚アクリル板
モニタ：GM管式サーベイメータ

PCR（Polymerase Chain Reaction）法
RI標識ヌクレオチドを加えてPCR反応を行います。2種類のプローブで挟まれた一定の長さのプローブDNAが合成できます。
1度プライマーを合成してPCR条件を設定しておけば、均一なプローブを何度でも作製できます。RI標識化合物は[αP]dATPなどのα位を標識したデオキシヌクレオチドを使用します。

32

二本鎖DNA

5'

3'

3'

5'

5'

3'

5'

3'

3'

5'

3'

5'

5'

3'

5'

3'

3'

5'

3'

5'

3'

5'

3'

5'

25〜40サイクル反応を繰り返すことで、2種類のプライマーで挟まれた領域が特異的に増幅される。
この時に同時に標識ヌクレオチドが取り込まれる。

二本鎖DNAの解離
プライマーとアニール

2種のプライマー

5'

3'

3'

5'
DNA合成伸長反応

5'3'

二本鎖DNAの解離
プライマーとアニールDNA合成伸長反応

5'

3'

5'

3'

3'

5'

3'

5'

図2-3：PCR法による核酸標識

末端標識法
T4ポリヌクレオチドキナーゼ（PNK）による5'-末端標識
アルカリフォスファターゼで脱リン酸化したDNAの5'-末端に、T4 PNKによるリン酸化反応で[γ-32P]ATPのγ-位の32Pを取り込ませます。一本鎖、二本鎖DNAのどちらも標識できますが、DNAの末端形状により取り込み効率がかわります。3'-末端が突出した形状の二本鎖DNAでは取り込み効率が低下するので、T4 DNAポリメラーゼなどで平滑末端にした後で標識反応を行います。

二本鎖DNA

5'

3'

3'

5'

一本鎖DNA

5'

3'

ターミナルトランスフェラーゼ（TdT）による3'-末端標識
TdTによりDNAの3'-末端に[α- 32P]d NTPまTdTによる3'末端標識

または

T4PNKによる5'末端標識たは[α- 32P]dd NTPを付加して標識します。
3'-末端の形状により効率がかわります。反3'5'

応液にカコジル酸（医薬用外毒物）を加え5'3'るので、廃棄に注意が必要です。

3'5'dNTP存在下いくつかのdNTPが付加

5'3'dNTP存在下
1つのdNTPが付加

5'

3'

3'

5'
γ位のPを
5'末端に付加

図2-4：末端標識法による核酸標識

in vitro 転写法による標識RNA合成
SP6やT3, T7 RNAポリメラーゼの転写プロモーター配列を持つベクターに、プローブとする目的DNA断片をクローニング
し、プロモーター特異的ポリメラーゼでRNAを合成させるときに[α-32P]UTPなどのRI標識リボヌクレオチドを取り込ませてRI標識RNAプローブを作製します。2種類のプロモーターを向かい合わせ持つベクターに目的のDNA断片を組み込めば、
ポリメラーゼの使い分けでセンスあるいはアンチセンスRNAの両方を合成できます。
DNA
プロモーター

プロモーターベクター

RNAポリメラーゼでRNA合成
RNA
図2-5：in vitro 転写法による核酸標識

31

32

P

2-1-2. プロトコール
ランダムプライマー法
ランダムプライマー法による標識プローブ作製には、各社からキットが数多く市販されています。詳細はご使用キットのプロトコールや添付書をご確認ください。
ここではMegaprime DNA標識キット※（製品コード : RPN1606）を使用した実験例をご紹介します。

＜メガプライム標識キットによるDNA標識＞■ 準備する機器と試薬 ■■ One Point advice ■■ プロトコール ■鋳型DNAの調整● 試薬
・ Megaprime DNA標識キット＊1

鋳型DNA量は2.5-25 ng/mlで十分↓ですが、熱変性の容量が10 µl未満で標識反応は効率が悪くなりますので、精製水

・ ランダムプライマー

キット中の酵素溶液以外を冷凍庫から取りを加えて調整してください。

・ 標識反応バッファー

出し、室温にもどす。

（[α-32P]dCTP用）（ヌクレオチドを含む）

酵素溶液は使用するまで冷凍庫に入れておく。

・ 酵素

鋳型DNA

・ コントロール標準DNA

プライマー溶液・ キャリアーDNA↓ 熱変性（沸騰水中、5分）する。＊2・ [α-32P]dCTP↓ チューブのふたをして遠心し、（110 TBq/mmol, 370 MBq/ml）
・ 標識用鋳型DNA（5 ng DNA/µl）
・ 0.2 M EDTA溶液● 機器
・ 恒温水槽（酵素反応用）＊25 µl（25 ng）

＊1

5 µl

変わりませんので省略しています。

＊3

溶液を底に集める。

・標識プローブの比放射能および取り込み率測定
赤外線ランプ、
シンチラント、
液体シンチレーションカウンタ用バイアルA) 2×SSC、
ワットマンDE81ろ紙（1 cm×1 cm以上）
B) TCA、グラスファイバーまたはニトロ
セルロースフィルター、真空吸引機など
・ 未反応ヌクレオチドの除去
ProbeQuant G-50 Micro Columnsなどの酵素溶液は使用直前に冷凍庫より取り出し、使用後はすみやかに冷凍↓ 室温にもどしてプライマーを庫に戻してください。

アニールさせる。
標識バッファー

10 µl

＊4

精製水

23 µl

素の活性低下の原因になります。

酵素溶液

2 µl＊3 を加える

↓ チューブのふたをして遠心し、● オプション

熱変性後、急冷するプロトコールもありますが、標識効率はほとんど＊5溶液を底に集める。
[α-32P] dCTP

激しく混合しないでください。酵

反応時間は1時間くらいまで伸ばしても影響ありません。RI標識ヌク

5 µl を加える

レオチドアナログ（[α-35S]dCTPαS↓ ピペットで数回穏やかに吸い上げてなど）を使用する場合は、反応時間混合する。＊4を伸ばす必要があります。

↓ チューブのふたをして遠心し、溶液を底に集める。

＊6

ハイブリダイゼーションを引き続↓ 37℃、10分間反応させる。＊5

いておこなう場合は、反応液を熱変↓ 0.2 M EDTA 5 µlを加え、性し、急冷して使用してください。

反応を停止する。＊6

すぐに使用しない場合は冷凍庫

未反応ヌクレオチドの除去（-20℃）で保存してください。プロー

標識効率の確認

ブの分解が起こるので、数日以内に核酸精製用マイクロカラム

使用してください。

標識ヌクレオチドの比放射能の違いによるプローブ比放射能への影響[α-32P]dCTP（370 MBq/ml、9.25 MBqパッケージ）には.3種類の比放射能を持つ製品があり、それぞれを用いてDNAを標識すると、RI標識ヌクレオチドの使用量と合成されるプローブの比
放射能との間には次のような関係があります。25 ngの鋳型DNAに4種のヌクレオチドが均一に存在すると考えると、ヌクレオチドのモル濃度は約75 pmolで、dCTPは約18.8 pmolになります（Davidson, N. and Szybalksi, W., p45-82 in The Bacteriophage Lambda, edited by Hershey
A.D., Cold Spring Harbor Laboratory [1971]）。全てのdCTP（18.8 pmol）をRI標識dCTPに置き換えるために必要な量は、それぞれの標識ヌクレオチドについて以下のように計算されます。
（1）比放射能220 TBq/mmolの場合は、約11.0 µl （4.18 MBq [113 µCi]）（2）比放射能110 TBq/mmolの場合は、約5.6 µl （2.09 MBq [56.4 µCi]）（3）比放射能30 TBq/mmolの場合は、約1.5 µl （0.55 MBq [15.0 µCi]）
このように、比放射能が高い [α-32P]dCTPの方が多量の標識化合物を使用しなければなりません。しかし、標識プローブの比放射能は、全ての放射能が取り込まれたとすれば以下のようになります。
（1）1×1010 cpm/µgDNA（2）5×109 cpm/µgDNA（3）1.3×109 cpm/µgDNA
実験でどのくらいの検出感度が必要か、1回あたりのプローブの量、何回実験を行うかなどを考慮に入れて、無駄のない使用計画を立ててください。

32

比放射能（TBq/mmol）

220

110

30

必要なRI総量（MBq）

4.18

2.09

0.55

液量（µl）

11

5.6

1.5

標識回数

2

4

16

プローブの比放射能（cpm/µgDNA）

1×10105×109

1.3×109

表2-1：各種標識ヌクレオチドでの標識反応の違い

高エネルギーβ線
しゃへい：1 cm厚アクリル板
モニタ：GM管式サーベイメータ

参考資料
標識プローブの比放射能および取り込み効率の測定
A）

B）
反応液1 lを20 lの水に加える

反応液1 lを20 lの水に加える

200 lの水、50 lのキャリアーDNA溶液
チューブ2本に10 lずつ加える

4枚のDE81ろ紙に5 lずつスポットする

2 mlの氷冷10 %TCAを加え、攪拌
氷浴中に15分静置

2×SSCで室温5分間の洗浄を2回、さらに水およびエタノール
ですすぐ

そのまま乾燥させ、カウント（I）沈殿を吸引ろ過してグラスファイバーろ紙に補集
2 mlの氷冷10 %TCAで6回洗浄

希釈液の一部をグラスファイバーろ紙にスポットし、乾燥させてカウント（I）

乾燥させ、
カウント
（II）

取り込み効率（%）=（II）/（I）×100

フィルターを乾燥させ、
カウント
（II）

取り込み効率（%）=（II）（/ （I）×測定量/全体量）×100

図2-6：取り込み効率の測定

比放射能の
計算

比放射能は単位（1 µgDNA）あたりの放射能（dpm）になります。ニックトランスレーション法のようなdNTPの置換えではDNA量は増加しませんが、ランダムプライマー法では新しいDNA鎖が合成されますから、反応液中にあるすべてのDNA量を計算する必要があります。以下はMegaprimeキットに掲載している計算式を用いて計算しています。。
全DNA量(ng) ＝

加えたRI量 (µCi) ×13.2＊×取り込み効率（%）[α-32P]dCTPの比放射能 (Ci/mmol)＋鋳型DNA量(ng)（ 4種のヌクレオチドの平均分子量の4倍を1320とし、それを100で割ったもの）＊

実験例の場合、取り込み効率が70 %なら、50 (µCi)×13.2×70 (%)

全DNA量＝

3000 (Ci/mmol)

取り込まれたdpmは＋25 (ng) ＝40.4 (ng)

50 (µCi)×2.2×104×70 (%) =7.7×107 (dpm)

これらより、比放射能は

7.7×107 (dpm)＝1.9×109 (dpm/µg)40.4 (ng)となります。

未反応ヌクレオチドの除去
ランダムプライマー法では取込み効率は60 %以上になりますので、未反応ヌクレオチドの除去は必須ではありません。しかし、ゲノミックサザンハイブリダイゼーションのように非常に高感度が要求される検出系や、非特異的バックグラウンドが出やすい場合には除去を行ってください。
ヌクレオチド除去用のゲルとミニカラムを用いて自作することもできますが、ここでは市販のProbeQuant G-50 Micro Columns※を用いた精製法を紹介します。

折る

ゲルをボルテックス
でよく懸濁する

キャップを
ゆるめる

図2-7：スピンカラムでの精製

1.5 mlチューブに入れプレスピン
1分間 735×g（3,000 rpm）

サンプル添加

スピン2分間735×g（3,000 rpm）

精製された
DNA

ランダムプライマー法の参考文献；
Feinberg, A. P. and Vogelstein,B., Anal.Biochem.,132, p.6-13 (1983)
Sambrook, J., Fritsch, E. F and Maniatis, T., Molecular Cloning, a laboratory manual (second edition), Cold Spring Harbor Laboratory (1989)

33

32

P

末端標識法 ―T4ポリヌクレオチドキナーゼ（PNK）による5'-末端標識反応
T4 PNKは、DNAの5'-末端のリン酸化反応を触媒する酵素です。リン酸化反応は可逆的な交換反応なので、制限酵素などで切り出したDNA断片をそのまま使用することもできますが（交換反応）、DNAの5'-末端をアルカリフォスファターゼにより脱リン酸化しておくことでリン酸化を効率よく行うことができます（リン酸化反応）。標識効率は、DNA末端の形状によって変わります。一本鎖DNAで最も高く、3'-末端が突出したDNAでは効率は低くなります。
一本鎖DNA ＞

二本鎖5'-突出末端＞

二本鎖平滑末端＞

二本鎖3'-突出末端

比放射能の高い標識プローブを作製するには、DNA断片を切り出す際に5'-突出末端を作る制限酵素を用いてください。

■ 準備する試薬 ■■ プロトコール1：交換反応 ■■ プロトコール2：リン酸化反応 ■● 試薬

エッペンドルフチューブに以下の試薬を反応液に加えるDNA断片に脱リン酸化し・ T4 PNK （10 U/µl）

加えます。

たDNAを用いて、[γ-32P]ATP量を変更す

・ 10×リン酸化バッファー

16.5 µl

る以外、操作はプロトコール 1と同じで（≦5 pmol 5'-末端）

す。

DNA断片

0.5 M Tris-HCl, pH7.6
0.1 M MgCl2

10×交換反応バッファー

50 mM DTT

2.5 µl・ 10×交換反応バッファー

エッペンドルフチューブに以下の試薬を加えます。

[γ-32P]ATP5 µl

0.5 M イミダゾール-HCl, pH6.6

T4 PNK

1 µl / 全量で25 µl

0.1 M MgCl2↓ 37℃、30分間反応

脱リン酸化DNA断片
20.5 µl（≦5 pmol 5'-末端）

50 mM DTT

↓ 70℃、10分間加熱して酵素を失活

2 mM ADP↓ +7 M酢酸アンモニウム10 µlを加える

・ [γ-32P]ATP（111 TB q/mmol,

10×リン酸化反応バッファー
2.5 µl+冷エタノール87.5 µl（2.5倍量）

370 MB q/ml）↓ -20℃で60分間[γ- P]ATP

1 µl

・ エタノール↓ 遠心分離T4 PNK

1 µl / 全量で25 µl

・ 7 M酢酸アンモニウム溶液↓ 沈殿に70 %冷エタノール1 ml加え

32

↓

洗浄

以下プロトコール 1と同様

↓ 乾燥
適当なバッファーに溶解
α-32Pとγ-32Pとの使い分け

ヌクレオチドが結合してDNA鎖を作るときには、α位のリン（P）が結合に使用されます（下記ヌクレオチドの簡略図を参照）。β位とγ位のPは遊離します。したがって、DNAポリメラーゼで標識を行う場合にはα-32Pを使用し、T4ポリヌクレオチドキナーゼで5'-末端を標識する場合にはγ-32Pを使用しなければならないことがわかります。
A

T

G

C

P〜P〜P
γ β α

P〜P〜P
γ β α

P〜P〜P
γ β α

P〜P〜P
γ β α

dATP

dTTP

dGTP

dCTP

各種ヌクレオチド三リン酸の簡略表現
32[γ-32P] dATPでDNA鎖合成[α- P] dATPでDNA鎖合成
P〜P〜
A

A

P〜P〜P

P

[α-32P] dATP

P〜P〜
G

P

C
P

C
P

A
P

T

A

A

P〜P〜P

P

P

[γ-32P] dATP

P〜P〜
32

P

C
P

C
P

A
P

P〜P〜
32

α位の Pが合成されたDNA鎖に残るG

γ位の Pははずれて、DNA鎖は標識されない

図2-8：DNA鎖の伸長に用いられるリン酸部位

34

T
P

高エネルギーβ線
しゃへい：1 cm厚アクリル板
モニタ：GM管式サーベイメータ

参考資料
末端mol数の計算

標識に使用するDNAは、末端のモル数から計算します。直鎖状DNAであれば、一本鎖DNAの場合5'-末端（mol）=DNA断片数（mol）

二本鎖DNAの場合5'-末端（mol）=DNA断片数（mol）×2となります。またプラスミドのような環状二本鎖DNAを一種の制限酵素で処理して開環させた場
合には、上記二本鎖DNAの場合と同じになります。
5’

3’

5’

3’

3’

・二本鎖DNA5’末端のmol数 ＝ 2×DNAのmol数

5’
5’

3’

・一本鎖DNA5’末端のmol数 ＝ DNAのmol数

5’

3’
5’

3’

5’

3’
5’

3’

3’
5’

・2ヶ所で切断したDNA5’末端のmol数 ＝（2＋1）× 2×DNAのmol数・Nヶ所で切断したDNA5’末端のmol数 ＝（N＋1）×2×DNAのmol数

図2-9：DNAの5' 末端

プローブの比放射能計算
標識するDNAの5'-末端mol数と [γ-32P]ATPのmol数の比がプローブの比放射能に影響します。大過剰の[γ-32P]ATPを用いれば比放射能は高くなります。また、比放射能の高い[γ-32P]ATPを用いてもプローブ比放射能を上げることができます。
5 µlの[γ-32P]ATP（111 TBq/mmol, 37 MBq/ml）には約1.7 pmol
5 µlの[γ-32P]ATP（222 TBq/mmol, 37 MBq/ml）には約0.8 pmolのATPが含まれ、そのうち[γ-32P]ATPは両方とも約0.5 pmol含まれています。222 TBq/mmolの方が[γ-32P]の割合が高いので、標識されたプローブの比放射能は高くなります。

DNAの純度 目的DNAを効率よく標識するためには、用いるDNAの純度が高いことが必要です。低分子の核酸が混在していると、5'-末端のmolが増えて標識効率の低下をまねきます。ディスポーザブルのゲル
ろ過カラムを通して低分子DNAを除くなど、できるだけ高純度で均一なDNAを用いてください。

標識プローブの精製
ランダムプライマー法やニックトランスレーション法などで標識したプローブと異なり、用いたDNA断片そのものには変化がないので、通常はカラム処理などでの精製・分画は必要ありません。
ただしオートラジオグラフィーでバックグラウンドが高い場合、カラムによる未反応の[γ-32P]ATPの除去を行ってください。
参考文献
Chaconas, G and van de Sande, J. H., Methods. Enzymol. 65, 75-88 (1980)

35

32

P

中エネルギーβ線
しゃへい：1 cm厚アクリル板
モニタ：GM管式サーベイメータ

Phosphorus-33

2-2. Phosphorus-33
半

減

25.3日

期

放出放射線

中エネルギーβ線（最大0.249 MeV）

汚染の検出

GM管式サーベイメータ
49 cm
0.6 mm
1 cm厚アクリル板（3 mm厚程度までうすくてもよいが、空気中の最大飛程
水中の最大飛程
しゃへい

強度が不十分になる）

33

P

days
0
10
20
30
40
50
60
70
80
90
100

Phosphorus-33 T1/2 : 25.3days
0
1.000
0.760
0.578
0.440
0.334
0.254
0.193
0.147
0.112
0.085
0.065

1
0.973
0.740
0.563
0.428
0.325
0.247
0.188
0.143
0.109
0.083
0.063

2
0.947
0.720
0.547
0.416
0.316
0.241
0.183
0.139
0.106
0.080
0.061

3
0.921
0.700
0.533
0.405
0.308
0.234
0.178
0.135
0.103
0.078
0.060

4
0.896
0.681
0.518
0.394
0.300
0.228
0.173
0.132
0.100
0.076
0.058

5
0.872
0.663
0.504
0.383
0.292
0.222
0.169
0.128
0.097
0.074
0.056

6
0.848
0.645
0.491
0.373
0.284
0.216
0.164
0.125
0.095
0.072
0.055

7
0.826
0.628
0.477
0.363
0.276
0.210
0.160
0.121
0.092
0.070
0.053

8
0.803
0.611
0.464
0.353
0.269
0.204
0.155
0.118
0.090
0.068
0.052

9
0.782
0.594
0.452
0.344
0.261
0.199
0.151
0.115
0.087
0.066
0.051

33

P

2-2-1. プロトコール
マクロアレイによる遺伝子発現のプロファイリング
現在、ヒト遺伝子の全シークエンスの解読をはじめ日々膨大な数の遺伝情報が蓄積されています。さらに、遺伝子としての機能別分類が多くのシークエンスに対して行われています。しかし、これらの遺伝子が生体内でどのような役割分担のもとに発現・機能しているのか、また、調節されているかについてはまだこれから解明されなければならない点です。このような遺伝子の役割を理解するのに重要なことは、単独の遺伝子発現を追及するのではなく、組織や器官、生体中でのあらゆる段階でのすべての遺伝子発現を連関付けて解析することです。
DNAアレイ解析は、サンプルのフォーマットサイズやスポット密度によってマクロアレイとマイクロアレイに区別されます。マイクロアレイの場合にはスポットが非常に高密度なため、アレイの作成から検出までに専用の機器が必要となります。特に検出系では蛍光レーザースキャンによる検出とコンピューターによる解析までがシステム化されています。発現の解析に用いられるマクロアレイには、正確な定量と解析を行うための大きなフォーマットサイズを十分な解像度でイメージ化する容量が求められます。また、高感度であることはもちろん、広い直線的な定量範囲（1,000-10,000倍）も必要です。
この目的には、RI核種として33Pがよく用いられています。
ここでは市販の核酸アレイ、Atlas cDNA Expression Arraysを用いて、STORMシステムで解析する方法をご紹介します。
詳細なプロトコールはClontech社の製品添付書をご参照ください。
■ 準備する試薬と機器 ■■ One Point advice ■■ プロトコール概略 ■

● 試薬

細胞の培養

・ Atlas Human Cancer cDNA Array↓ RNAの精製＊1＊1↓ 標識cDNAプローブの調製

精製の段階で、純度確認を必ず行っ↓ カラム精製＊2てください。

（Clontech社）
・［α-33P］dATP（>92.5 TBq/mmol : 370 MBq/ml）↓ ハイブリダイゼーション
解析

● 機器

RNAの純度が結果を左右します。

＊2

必ず標識cDNAプローブの精製を行ってください。

・ PCR用サーマルサイクラー
・ ハイブリダイゼーション用ボトル、
振とう恒温槽・ STORM840システム（GEヘルスケア）

図2-10：STORMシステム

図2-11：Atlas Human Cancer cDNA Expression Array

Cell cycle regulators
Growth regulators
Intermediatefilament markers

Apoptosis
Oncogenes
Tumor suppressors

DNA damage
response, repair& combination
Cell fate &development
Receptors

Cell adhesion &motility
Angiogenesis

Invasion regulators
Cell-cell interactions

Growth factors
Cytokines

それぞれのスポットには、200〜600 bpのcDNA断片が10 ng含まれています。
陰性コントロールとハウスキーピング遺伝子も含まれるため、正確な遺伝子
発現プロファイルの作成が可能です。

36

中エネルギーβ線
しゃへい：1 cm厚アクリル板
モニタ：GM管式サーベイメータ

参考資料【実験結果の例】
ヒトJurkat T細胞白血病株は、抗原刺激後のT細胞における情報伝達を研究するための実験モデルとして利用されています（1）。PHAおよびPMAは、インターロイキン2（IL-2）とインターロイキン2レセプター（IL2-R）遺伝子の発現を活性化します（2, 3）。IL-2遺伝子の発現制御は、Jurkat細胞株をモデルとして詳細に調べられており、T細胞を刺激後、数日間で100以上の遺伝子が活性化されることが知られています（4, 5）。
T細胞刺激に関わる遺伝子を同定するため、活性化したJurkat細胞の遺伝子発現をAtlas
Human Cancer cDNA Expression Arrayによって分析しました。まず、PHAとPMAで刺激および未刺激のJurkat細胞からmRNAを抽出後、33P標識したcDNAプローブを調製し、2重にスポットしたAtlas Arrayでそれぞれハイブリダ
イゼーションしました。図2-12は、33P標識したプローブを用いた場合のハイブリダイゼー
ションのパターンを示しています。これをImageQuant※ソフトウェアで解析した結果が
図2-13です。ImageQuantの定量データを
Excelで解析し、PHAとPMAの刺激に応答して遺伝子発現が大きく変化した20種類の遺伝子をリストアップしました（表2-2）。この解析によって検出された遺伝子は、Atlas cDNA
Expression Arrayの座標、遺伝子名と相対的な誘導レベルによって同定しました。
VimentinとEarly Growth Response Protein 1（EGR-1）は、Atlas Human Cancer cDNA標的
遺伝子の中で、最も高く発現が誘導される遺伝子であることがこの研究で明らかにされました。Vimentinは細胞骨格の伸長を制御する
遺伝子産物で、ヒトT細胞白血病ウィルスタイ
プIを形質転換した細胞株で高レベルに転写されていることが知られています（6）。
PHA/PMA刺激によるJurkat T細胞の活性化は、同様の効果を持つことがわかりました。EGR1遺伝子は、休止T細胞の増殖刺激に応答して活性化されるジンクフィンガー転写因子ファ
ミリーをコードしています（7, 8）。したがって、刺激後のJurkat細胞内でEGR-1 mRNAの転写レベルが高いことは予測されました。
こ の よ う に 、 Atlas human Cancer cDNA
Expression Arrayを 用 い る こ と に よ っ て 、Jurkat T細胞を刺激して誘導される多数の遺伝子が正確に同定できることがわかります。

図2-12：33P標識cDNAをプローブとしたAtlas Human Cancer cDNA Expression
Arrays解析例
休止（左）および刺激後（右）のJurkat T細胞から抽出したmRNAを使用してcDNAプロー
ブを作製しました。プローブ化したアレイはストレージフォスファスクリーンで２日間露光し、STORM 840システムを用いてイメージ化しました。明らかな発現誘導が見られる遺伝子の一例を丸印で示しました（座標A7m）。左右のアレイを正確に比較するには、
ハウスキーピング遺伝子のシグナル強度に基づいて、それぞれ標準化します。

Differential Expression - Atlas Human Cancer cDNA Expression Array
Coordinate Gene
Level
Up-regulated Genes
A7d
Keratin
2.2
A7m
Vimentin
7.7
B2c
Apo-2 ligand (TRAIL)
3.6
B7n
STAT5B
2.0
D5b
Zyxin & Zyxin-2
3.2
D6b
Semaphorin (CD100)
2.2
E2b
TIMP-1
3.5
E6aAlpha-catenin
2.4
F1e
VEGF (VGF)
2.2
F3j
EGR-1
7.1
Down-regulated Genes
A1a
Cell Division Control Protein 2
3.8
A1b
Cell Division Protein Kinase 2
2.1
A1c
Cell Division Protein Kinase 3
2.0
A2j
Cyclin B1 G2/Mitotic Specific2.3
A2nCyclin D3
2.0
A3k
PLK-1
3.0
A5e
PCNA (Cyclin)
2.1
B5c
CD27BP (Siva)
2.6
C1n
DNA Topo II Alpha Isozyme
2.1
E3f
NDK B
2.0
表2-2：Atlas Human Cancer cDNA Expression Arrayから得られたPHA/PMA刺激によって活性化したJurkat細胞内で発現した遺伝子
アップレギュレートおよびダウンレギュレートされた顕著な10個の遺伝子をリストにしました。スポットの位置は、Atlas Human Cancer cDNA Expression Arrayスポット座標から求めました。シグナル強度の標準化には、ハウスキーピング遺伝子（HPRT）を用いました。遺伝子の発現レベルは、標準化シグナルに比べた遺伝子の発現の強度を示しています。
図2-13：ImageQuantによりグリッド化したAtlas Human
Cancer cDNA Expression
Array の解析結果
グリッドオブジェクトを使用して区分けし、各アレイ上のすべての2重スポットを同時に定量しました。ゲノムDNAとハウス
キーピング遺伝子のスポット用のグリッドは別枠として示されています。アレイ間のシグナル
強度を合せるためには、HPRT
ハウスキーピング遺伝子の測定値を使用して標準化しました。

参考文献
1.Weiss, A. et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 81, 4169-4173 (1984)
2.Manger, B. et al., J. Immunol. 139, 2755-2760 (1987)
3.Taniguchi, T. et al., Nature 302, 305-310 (1983)
4.Brunvand, M.W. et al., J. Biol. Chem. 263, 18904-18910 (1988)
5. Ullman, K.S. et al., Ann. Rev. Immuol. 8, 421-452 (1990)
6.Lilienbaum, A., et al., J. Virol. 64, 256-263 (1990)
7. Muller, H-J. et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 88, 10079-10083 (1991)
8.Patwardhan, S. et al., Oncogene 6, 917-928 (1991)

37

33

P

中エネルギーβ線
しゃへい：1 cm厚アクリル板
モニタ：GM管式サーベイメータ

半

減

87.5日

期

放出放射線

中エネルギーβ線（最大0.167 MeV）

汚染の検出

薄窓GM管式サーベイメータ

空気中の最大飛程

26 cm
0.32 mm
1 cm厚アクリル板（3 mm厚程度までうすくてもよいが、水中の最大飛程
しゃへい

強度が不十分になる）● 亜硫酸ガスや硫化水素が発生するおそれがあるので、吸引しないように実験条件に注意を払ってください。
● バイアルの開封や使用にあたっては、必ず換気の良いフード中で行って

特記事項

ください。
● 35S標識アミノ酸は、放射線分解で揮発性分解生成物を生じ、反応容器や装置内面が汚染している可能性があるので注意してください。

35

S

days
0
7
14
21
28
35
42
49
56
63
70
77
84

Sulphur-35
0
1.000
0.946
0.895
0.847
0.801
0.758
0.717
0.678
0.642
0.607
0.574
0.543
0.514

1
0.992
0.939
0.888
0.840
0.795
0.752
0.711
0.673
0.637
0.602
0.570
0.539
0.510

T1/2 : 87.5days
2
0.984
0.931
0.881
0.833
0.789
0.746
0.706
0.668
0.632
0.598
0.565
0.535
0.506

3
0.977
0.924
0.874
0.827
0.782
0.740
0.700
0.662
0.627
0.593
0.561
0.531
0.502

4
0.969
0.917
0.867
0.820
0.776
0.734
0.695
0.657
0.622
0.588
0.557
0.526
0.498

5
0.961
0.909
0.860
0.814
0.770
0.728
0.689
0.652
0.617
0.584
0.552
0.522
0.494

6
0.954
0.902
0.854
0.807
0.764
0.723
0.684
0.647
0.612
0.579
0.548
0.518
0.490

Sulphur-35

2-3. Sulphur-35

35

S

2-3-1. プロトコール
in vitro Translation
cDNAがコードするタンパク質を試験管内で無細胞的（大腸菌や培養細胞を使用せず）に合成させる方法です。細胞中ではさまざまなタンパク質が作られているので、ある特定タンパク質の発現を確認するには、抗体を用いて免疫学的に検出しなければなりません。目的タンパク質の遺伝子を入手可能な場合には、cDNAを発現するプラスミドを大腸菌などの細胞に導入して、発現したタンパク質を検出することはできます。しかし、結果を得るまでに多大な時間が必要です。さらに、抗体が無い場合には、発現タンパク質を確認できない可能性もあります。
in vitro Translationでは、反応系に加えたmRNA（SP6やT7 RNAポリメラーゼで合成）からコードするタンパク質を直接合成します。この反応過程に標識アミノ酸を添加すると、新規に合成されたタンパク質のみが標識されます。一般的に、細胞抽出液には細胞由来のmRNAが僅かに含まれるため、目的のタンパク質に加えて細胞由来タンパク質も標識されます。
しかし、in vitro Translation後の反応液を電気泳動で分離すると、多くの場合、目的タンパク質はcDNAから推測される分子量にバンドとして検出することができます。発現を確認するために抗体の調製が必要でなく、cDNAクローンさえ得られればすぐにタンパク質の確認ができる点が利点です。
cDNA
プロモーター

プロモーターmRNA
細胞抽出液
RI標識アミノ酸

転写用
ベクター

試験管内で
タンパク質合成

RNAポリメラーゼでmRNA合成標識されたタンパク質

図2-14：in vitro Translationによる標識タンパク質合成

ここではRabbit reticulocyte lysateシステム※（製品コード : RPN3150）を用いた方法をご紹介します。
＊3■ 準備する試薬と機器 ■● 試薬
・ RRLシステム（コード番号 : RPN3150）■ One Point advice ■■ プロトコール ■mRNAの調製＊1↓

lysateにはtRNA、へミン、クレア

チンホスホキナーゼとEGTAが含ま

translation反応混合液

れています。

lysate＊1translation mix

4 µltranslation mix＊2

2.5 M 酢酸カリウム

2 µl

2.5 M 酢酸カリウム溶液

25 mM 酢酸マグネシウム 1 µl

識アミノ酸を除いたアミノ酸Mixを2.5 M 塩化カリウム溶液

L-[35S] methionine

4 µl

使用します（本実験例では

25 mM 酢酸マグネシウム溶液

lysate20 µl

Methionineが除かれています）。

RNase-free 水RNA（0.5〜2.0 µg）を加え、コントロールRNA

全量を50 µlにする

・ L-[35S] methionine（>37 TBq /mmol, 555 MBq/ml）
・ SDS-PAGE用試薬＊4↓ 30℃、60〜90分間反応＊2＊3translation mixには、加えるRI標

全てのステップでRNaseが混入しないように注意してください。

↓ 氷浴上に置く
SDS-PAGEで合成の確認＊4-70℃のフリーザーから取り出し、使用分だけを溶かして加えてくださ● 機器い。混合は穏やかに行ってください。

・ 電気泳動用機器
・ フィルム、現像用機器（またはイメージアナライザー）

38

中エネルギーβ線
しゃへい：1 cm厚アクリル板
モニタ：GM管式サーベイメータ

参考資料
細胞抽出液

細胞抽出液としては、Rabbit Reticulocyte Lysate（RRL : ウサギ網状赤血球ライセート）や
Wheatgerm Extract（小麦胚抽出液）などが使われます。
どの細胞抽出液が適しているかはmRNAの種類によって異なります。一般的には、まずRRLで試してみることをおすすめします。
転写から翻訳までを試験管一本で行うことのできるシステムも市販されています。このようなシステムを使用すれば、RNAの抽出・精製のステップを行わずにDNAから簡便にタンパク質を合成することができます。

コントロール実験in vitro Translationを行う場合、mRNAを加えないコントロール反応を必ず行ってください。RRLなどの細胞抽出液は内在性mRNAが多少存在しており、それらから翻訳される少量のタンパク質がバックグラウンドになります。導入したmRNAから合成されたタンパク質の検出を容易にする
ためには、コントロール実験の結果との比較が必須になります。

翻訳効率

in vitro Translationの実験条件が正しいことを、コントロールRNAを用いて確認してください。上述したシステムに添付されるコントロールRNAからは、メチオニンを含まない一つのペプチドを入れて7種類のペプチドとタンパク質が合成されます。オートラジオグラフィーでは下記の6種類のタンパク質が認められます。
RNAの大きさ2800 nucleotides

アミノ酸数

分子量

等電点

Mr（12.5 %gel）

Mr（7 %gel）

741

82,323

8.90

65 k

84 k

665

73,751

8.44

60 k

76 k

460

51,993

6.44

50 k

57 k

281

30,348

10.32

31 k

32.7 k205

21,776

10.35

23 k

dye front

56

6,323

9.36

9.1 k

dye front

表2-3：コントロールRNAから翻訳されるタンパク質

コントロールRNAに比べて、実際のサンプルmRNAから十分量のタンパク質合成が認められない
場合は、カリウムおよびマグネシウムイオンの濃度を調整してください。
プロトコールでは
K+=100 mM、Mg2+=0.5 mMになっています。

カリウム濃度は、
CAP構造のないRNAを使用する場合は50〜175 mM
CAP構造があるRNAでは70〜90 mM
マグネシウム濃度は0.25〜2 mMの範囲で至適条件を検討してください。

参考文献
Pelham, R. B. and Jackson, R. J., Eur. J. Biochem., 67, 247 (1976)

39

35

S

細胞の標識細胞培養液中にRI標識アミノ酸を加えると、それらは細胞に取り込まれてRI標識タンパク質が合成されます。実験操作は非常に簡単ですが、一般的に使用される [35S] 標識のメチオニンやシステインは分解して揮発性の放射性亜硫酸ガスなどを生成しますので、実験環境には特別に注意をはらう必要があります。放射能を持った揮発性のガスを拡散させないように、また、体内に取り込まないように細心の注意をしなければなりません。細胞培養や実験操作は必ず換気の良いフードの中で行ってください。そして、フードの吸い込み口にはチャコールフィルターを付けてガスを吸収させるようにしてください。
細胞のRI標識用に恒温槽を用いる場合は、可能な限り専用の恒温槽を準備するようにしてください。恒温槽内の底には水をはったトレイを置き、頻繁に水を交換してください。また、恒温槽内の上部にはチャコールフィルターをセットし、棚やガラス扉、ファン部分も汚染しますので定期的に除染してください。専用の恒温槽を用意できない場合には、チャコー
ルをキムワイプなどに包んだものを入れて揮発性生成物を吸収させるようにした箱の中で細胞を培養するようにしてください。
3■ プロトコール＊ ■■ 準備する試薬と機器 ■● 試薬・ L-[ S] methionine35＊1細胞の培養＊3＊1↓ 培地（メチオニン不含）で洗浄使用します。

細胞標識用のL-[35S] methionineを↓ 3.7 MBq/ml L-[35S] methionine/培地

・ 培地
・ 培地（メチオニン不含）■ One Point advice ■

＊2

● 機器
・ 細胞培養に必要な機器類（メチオニン不含）を添加↓ 2〜24時間培養＊2培地（メチオニン不含）は、各培

地メーカーから販売されています。

細胞の捕集、洗浄＊4＊3

付着細胞は70〜80 %コンフルエ

ントまたは5〜10×105/6 cm dish、
浮遊細胞は70〜80 %コンフルエント
くらいを目安にしてください。

＊4

洗浄することで、取り込まれなかった標識アミノ酸を除いて次の実験へ進みます。

フルオログラフィー
免疫沈降法では、目的タンパク質と抗体との複合体を形成させた後にSDS-PAGEなどの電気泳動法で分離・検出します。
高感度な検出を行うためにフルオログラフィーが用いられます。フルオログラフィー用増感剤はPPO（蛍光体）をDMSOに溶解して自作することも可能ですが、DMSOなどの有機溶媒を含まない無臭で安全な市販品も市販されています。
ここでは、Amplify※（製品コード : NAMP100）を使用した方法をご紹介します。
■ 準備する試薬と機器 ■■ One Point advice ■■ プロトコール ■

● 試薬

ゲルの固定

＊1

・ Amplify↓ 15〜30分間、ゲルをAmplifyに浸して消去時間が延長しますので、室温に・ ゲル染色液（または固定液、メタノール：酢酸：水＝25：10：65）

静かに振とう・ 染色用トレイ

くらべて有効な露光を長く行うこと↓ ゲルを取り出し、60〜80℃で乾燥ができます。

-70℃ でフィルム に露光
＊1

● 機器

β線より生成した不安定な光子の＊2（またはイメージアナライザーで解析）＊2

感度を上げるために、フィルムを

プレフラッシュすることもあります。

・ ゲル乾燥機
・ フィルム / 現像用機器（またはイメージアナライザー）40

中エネルギーβ線
しゃへい：1 cm厚アクリル板
モニタ：GM管式サーベイメータ

参考資料

標識アミノ酸 細胞標識では、in vitro Translation で使用するほどの高純度標識アミノ酸を用いる必要はありません。取り込まれなかった標識体は、実験の次ステップに進む段階で除かれます。35Sの場合には、一半減期くらいの間は使用することができますが、高い標識効率を得るためにはフレッシュな標
識アミノ酸を使用してください。単一の標識アミノ酸では標識効率に限界がありますので、L-[35S]
methionine とL-[35S] Cysteinを混合した細胞標識用アミノ酸混合液も販売されています。

実験例

14
12
取り込み（dpm ×10-5）酸不溶化物中の放射活性（dpm）

107

106

105

10
8
6
4

104
2

3.7
37
370
L-[35S]メチオニン（kBq/ml）

1

2

3

時間（時）

図2-15：メチオニン濃度の違いによる細胞への取り込み

図2-16：標識の時間変化

MRC-5細 胞 を 細 胞 標 識 用 メ チ オ ニ ン ※ （ 製 品 コ ー ド :SJ1015）で標識しました。メチオニン不含EMEM培地（10 %Calf Serum添加）で1時間、37℃で培養して標識し、細胞を回収後、10 %TCA沈殿によりガラス繊維ろ紙にタンパク質を捕集して液体シンチレーションカウンタで放射活性を測定しました。

細胞標識用メチオニン※（製品コード : SJ1015）でマウス
3T3細胞を標識しました。標識メチオニンを370 kBq/mlになるようにメチオニン不含培地に加えて左図と同様に液体
シンチレーションカウンタで測定しました。

標識メチオニン溶液にはRI化合物およびアミノ酸の安定性を保つためにさまざまな物質が添加されている場合があります。下記のように、細胞に対して悪影響を与える物質もありますので、用いる細胞株の培養に支障をきたす物質が含まれていないか確認してください。
[3H]チミジン取り込み率（%コントロール）

安定化剤

3700

100

50

0.8

1.5

3

6

12

25

50

安定化剤濃度（mM）
図2-17：安定化剤の細胞に与える影響
標識メチオニンの安定化のために加えられる物質の細胞に与える影響について、BHK21細胞を用いたチミジンの取り込みによって評価しました。それぞれの安定化剤存在下で細胞を37℃、48時間培養した後、ウェルあたり37 kBqのチミジンを加えて取り込みを液体シンチレーションカウンタで測定しました。
コントロールp-アミノ安息香酸

2-ピリジル酢酸
ピリジン3,4-ジカルボン酸

41

35

S

γ線
しゃへい：0.02 mm厚鉛板
モニタ：125I用シンチレーションサーベイメータ

Iodine-125

2-4. Iodine-125
半

減

59.4日
35 keV γ線（7 %放出、93 %内部転換）
27-32 keV X線（140 %Teのk X線）
125
I用シンチレーションサーベイメータ
1 GBq点線源から1 mの距離で41 µSv/時（4.1 mrem/時）
0.02 mm厚鉛で半減期

主要放出放射線
汚染の検出
線

量

しゃへい

● ヨウ素は揮発性物質であり、体内に吸収された場合、甲状腺で選択的に濃縮・蓄積が起こります。使用にあたっては、換気に注意して、必ずフード内で全ての作業を行ってください。換気口にはチャコールフィルターなどを取り付け、汚染した空気がそのまま外部に出ないようにしてください。
また、使用者の定期的な甲状腺検査も行うべきです。
● ヨウ素イオンを含む溶液を凍結したり、酸性化させた場合は、揮発性ヨウ素分子を生じます。

特記事項● ヨウ素標識化合物の中には手術用ゴム手袋を透過してしまうものがあります。ポリエチレン製の手袋を二重にして取り扱ってください。
● 誤って吸入してしまった場合、甲状腺保護のため、ヨウ化カリウム（130 mg)
やヨウ素酸カリウム（170 mg）をすみやかに投与してください。
● 廃棄物は、可能な限り速やかに封をして処理してください。廃液中のヨウ素イオンを、アルカリ性チオ硫酸ナトリウム（チオ硫酸ナトリウム25 g、ヨウ化ナトリウム2 gを1 N水酸化ナトリウム溶液1 lに溶解したもの）
で安定化させることも必要です。

125

I

days
0
20
40
60
80
100
120
140
160
180
200
220
240

Iodine-125
0
1.000
0.792
0.627
0.497
0.393
0.311
0.247
0.195
0.155
0.122
0.097
0.077
0.061

2
0.977
0.774
0.613
0.485
0.384
0.304
0.241
0.191
0.151
0.120
0.095
0.075
0.059

4
0.954
0.756
0.598
0.474
0.375
0.297
0.235
0.186
0.148
0.117
0.093
0.073
0.058

T1/2 : 59.4days
6
0.932
0.738
0.585
0.463
0.367
0.290
0.230
0.182
0.144
0.114
0.090
0.072
0.057

8
0.911
0.721
0.571
0.452
0.358
0.284
0.225
0.178
0.141
0.112
0.088
0.070
0.055

10
0.890
0.705
0.558
0.442
0.350
0.277
0.219
0.174
0.138
0.109
0.086
0.068
0.054

12
0.869
0.688
0.545
0.431
0.342
0.272
0.214
0.170
0.134
0.106
0.084
0.067
0.053

14
0.849
0.673
0.533
0.423
0.334
0.264
0.209
0.166
0.131
0.104
0.082
0.065
0.052

16
0.830
0.657
0.520
0.412
0.326
0.258
0.205
0.162
0.128
0.102
0.080
0.064
0.050

18
0.811
0.642
0.508
0.403
0.319
0.252
0.200
0.158
0.125
0.099
0.079
0.062
0.049

125

I

2-4-1. 125I標識
新規物質の研究を行う場合には、その化合物のRI標識体が必要になります。トリチウム水やトリチウムガスを使用した置換による方法が簡便ですが、置換反応には多量のトリチウムを必要とし、効率もよくない上に、得られるRI標識化合物のRI標識位置や比放射能の点で最善の方法であるとは言えません。ライフサイエンス分野の研究で必要になるRI標識化合物
は、タンパク質やペプチドがほとんどで、これらの標識のために125Iが用いられています。
Na125Iから酸化剤や酵素で遊離の125Iを生じさせ、芳香族アミノ酸（チロシン残基やヒスチジン残基）に導入する直接標識法と、125Iで官能基のある化合物を標識しておき、この125I標識化合物と目的の物質との親和性を利用して結合させる間接標識法に大別できます。
いずれの標識方法でも、1度の実験に使用する125I標識体（18.5 MBq以上）は市販の125I標識化合物（370 kBq以下）を使用す
る場合の数十倍以上になります。開封、分注および反応操作は、必ずよく換気されたフードの中で行ってください。また、
適切なしゃへい材を使用して、気化した125Iを捕集するチャコールトラップも準備してください。

直接標識法
I

酸化剤として遊離の125Iを生成するための物質として、クロラミン-T（N-Chloro-Ptoluensulphonamide）や、イオドジェン（IODO-GEN※：1,3,4,6-Tetrachrolo-3α,

+

I ＋R

O

–

+

O–

H ＋R

6α-diphenylglycoluril）などがよく使用されます。これらの酸化剤は、RI標識ヨウI

化ナトリウムを酸化型に活性化し、主にチロシン残基のフェノール環に125Iを導入
I+＋ R

します。

I
O–

H +＋ RO–
I

また、酵素標識法にラクトペルオキシダーゼ（Lactoperoxidase）が一般的に用い
図2-18：125Iのフェノール環への導入

られています。

間接標識法
間接法には、市販の[125I]標識Bolton & Hunter試薬（N-Succinimdyl 3-(4-hydroxy, 5-[125I]iodophenyl)propionate）が使われます。これはアシル化剤のN-Succinimdyl 3-(4-hydroxyphenyl)propionateをクロラミン-T法で125I標識したものです。これと、タンパク質のアミノ基（たとえばリジンのεアミノ基や、N末端アミノ基）が縮合反応し、アミド結合を形成します。
他にも多数の125I標識化合物を使用した例が報告されています。
OH

OH

OH

125

125

I

C

クロラミン-T法でヨウ素化
O
CH2

CH2
C

H

C

C

O

C

CH2
H

N
C

H

＋

O
C

C

CH2

O

N-Succinimidyl 3-(4-hydroxyphenyl) propionate

CH2

N
C

H
O

O

CH2

O

NH2

(CH2)4

O

I

NH

C

CH

NH

C

CH2
O

NH

H

C

C

H

O

NH

(CH2)4CH
CO
Bolton and Hunter 試薬

NH

リジンのε-アミノ基
標識タンパク質

図2-19：Bolton & Hunter試薬とアミノ基の反応

42

O

O

γ線
しゃへい：0.02 mm厚鉛板
モニタ：125I用シンチレーションサーベイメータ

参考資料
125

Iと131I125

I（放射性ヨウ素-125）はライフサイエンスの研究によく用いられます。同じヨウ素の放射性同位体として131I があります。131I は高比放射能ですが、半減期が8日と短いため、現在は研究目的であまり使用されません。診断、治療目的ではよく使用されています。

クロラミン-T法
幅広いpH条件で標識できますが、pH 7.5付近で効率が最も高く、pH 6.5以下または pH 8.5以上では低下します。ヒスチジンのイミダゾール環へはpH 8.0-8.5以上で標識効率が高くなります。

標識法の選択 標識する物質にチロシン残基が存在しない場合は、間接標識（B&H）法で125Iを目的分子に取り込ませます。チロシン残基を持つタンパク質・ペプチドの場合は、まずクロラミン-T法を試して生
理活性の有無を確認します。標識反応後に生理活性の低下や消失が起こった場合は、ラクトペル
オキシダーゼ法で標識を行います。それでも活性の低下が起こる場合は、間接標識（B&H）法で標識を行います。

直接標識法の注意点
酸化剤の量
過剰な酸化剤の存在はタンパク質の酸化、特にトリプトファンのインドール環、メチオニン、システインのSH基と反応を起こし、タンパク質を不安定にします。
mono-, di-Iodide
チロシン残基が一ヨウ素化あるいは二ヨウ素化される程度は、反応時の水素イオン濃度やイオン
環境とタンパク質分子内のチロシン残基の立体的な配置によって左右されます。
たとえば、インスリンをpH 1.0とpH 7.5で標識した場合、pH 7.5で標識した方がモノヨードチロシ
ンとして存在するヨウ素が多く、均一なヨウ素化を行うことができます。また、ゆっくり反応させるほど分子間に均一にヨウ素が分配されます。
反応条件
直接法の標識反応は幅広いpH範囲で行うことができます。標識反応後に生理活性が低下あるいは失活してしまう場合、標識反応条件を変えて行うことで満足のいくRI標識体が得られることもあります。
反応液の混和均一なヨウ素化を行うために、反応液を迅速に混和してください。
放射性ヨウ素の付着
放射性ヨウ素はガラス器具に付着します。反応には、プラスチックチューブやシリコン処理したガラスチューブを使用してください。さらに、付着を防ぐためにBSAなどでコーティングすることも行われます。
間接標識法
B&H試薬は、mono-iodo ester体で分子量387です。あまり小さなタンパク質を標識すると、構造の変化が大きく、生理活性がなくなる場合があります。
B&H試薬は、製品の安定化のため、ベンゼン溶液になっています。使用前に良く換気されたフード内で乾燥窒素を吹きかけながら除去してください。汚染、吸入しないよう十分注意して行ってください。
各標識法の参考文献
クロラミン-T法
ラクトペルオキシダーゼ法
イオドジェン法
B&H法

Greenwood et.al.,
Marchalonis
Fraker et.al.,Bolton et.al.,

Biochem.J.,89,114 (1963)
Biochem.J.,113,229 (1969)
B.B.R.C.,80,849 (1978)
Biochem.J.,113 ,529 (1969)

43

I

125

2-4-2. プロトコール
クロラミン-T法によるタンパク質標識
—
[Na]

+

CH3

SO2 —N—C

図2-20：クロラミン-Tの構造

クロラミン-Tの強力な酸化力でRI標識ヨウ化ナトリウム（Na125I）を酸化し、タンパク質中に含まれるチロシン残基中のフェノール環の水酸基に対してオルト位の炭素と反応が起こり125Iが導入されます。標識反応後、未反応の125Iと標識されたタン
パク質はゲルろ過カラムで分離精製します。

チロシン残基の標識（最も一般的な方法）■ 準備する試薬と機器 ■■ One Point advice ■■ プロトコール ■● 試薬

標識反応＊1・ Na125I（carrier-free : 3.7 GBq/ml）

ポリスチレンチューブにNa I を18.5〜37

クリップなどを5 mm位に切断し、・ 0.25 M PBS, pH 7.5

MBq（5〜10 µl）入れ、50〜100 µlのPBS

ガラスキャピラリーに溶封して作・ 0.5 mg/mlクロラミン-Tを加える成）を入れて反応中攪拌してくださ（in 0.05 M PBS）

＊1

125

↓

チューブに小さな攪拌子（ペーパーい。各試薬の分注はできるだけ速や・ 0.17 mg/mlシステイン（in 0.05 M PBS）

標識タンパク質

10 µl（5-10 µg）

・ 2 mg/ml NaI（またはKI）

クロラミン-T

10〜20 µlを加える

かに行ってください。

↓ 15〜30秒間混合＊2＊2・ BSA（または血清）↓ システイン 100 µlを加える

よって適切な時間を設定してくださ・ 標識用タンパク質↓ 0.5 % BSAを含むNaIで全量を1 mlにするい。

精製＊3 125

PD-10カラムを、0.5 % BSAを含むPBS

メータでモニタしながら、ポリスチ（in 0.05 M PBS）

反応時間は標識するタンパク質に（0.5-1.0 mg/ml PBS）
● 機器
・ ポリスチレンチューブ（直径12 mm×70 mm、容量4 ml）
・ PD-10カラム※（製品コード : 17-0851-01）
・ マグネチックスターラー

I用シンチレーションサーベイ

30 mlで平衡化する

レンチューブに1 mlずつ集めてくだ↓

さい。

標識反応液をアプライし、カウントがなくなるまでPBSで溶出する＊3【注意】●

標識ヨウ化ナトリウム（Na125I）を用いるタンパク質の標識は、比較的多量のRIを使用します。安全面からも、市販の RI標識タンパク質が入手可能であれば、それを用いることで、125Iの取扱い量を減らすことができます。

●

標識反応は必ずよく換気されたフード内で行ってください。取扱いには細心の注意をはらい、無理はしないでください。手袋、めがねはもちろん、チャコール（活性炭）を含んだマスクなども着用すると良いでしょう。

●

衣服、特に袖や袖口、手袋は頻繁にモニタしてください。特に、手袋は汚染が2〜10 µCi/mm2を超えたら速やかに交換してください。

●

作業用のドラフト内には以下のものを備えておいてください。
・ 十分量の手袋
・ 十分量のティッシュペーパー
・ 交換した手袋や、汚染物を入れるための、ふた付廃棄物入れ
・ 125I用しゃへい材
44γ線
しゃへい：0.02 mm厚鉛板
モニタ：125I用シンチレーションサーベイメータ

参考資料
125

I 標識によるタンパク質の変性
125Iで標識したタンパク質では、生理活性や免疫活性が低下する場合があります。これは、次のよ

うなことが原因と考えられます。
1）ヨウ素原子の付加
チロシン残基などにヨウ素原子が付加されたために生ずる活性の低下や消失で、クロラミン-T法
で特に問題になります。標識部位がそのタンパク質の活性に大きく関与している場合には、異なる位置に125I標識を導入することを検討しなければなりません。
2）放射線の影響
125

Iからの放射線により、タンパク質の構造が変化して変性することがあります。しかし、一般的には変性を引き起こすほど大量の125Iは使用しないのでそれほど大きな問題ではありません。
3）標識用試薬の影響
酸化剤や還元剤によりS-S結合やSH基が酸化あるいは還元されて、タンパク質の立体構造に変化が起きる場合があります。クロラミン-T法で用いる酸化剤や還元剤は非常に低濃度で、また短時間しか使用しませんが、標識されるタンパク質によっては影響が大きくあらわれることもあります。このような場合には、他の標識法を検討しなければなりません。
4）標識ヨウ化ナトリウム（Na125I）中の不純物の影響同じ条件で標識反応を行ったにもかかわらず、異なる結果、たとえばタンパク質が失活したり標
識効率が低下する場合、標識ヨウ化ナトリウムに原因があることがあります。高比放射能の標識体を得るために、可能な限りフレッシュなバッチを使用することをおすすめします。

標識タンパク質の比放射能計算
得られた放射能カウントから、標識されたタンパク質の比放射能などは以下のように計算します。
（検定日より2日後のNa125Iを18.5 MBq使用して、2 µgのタンパク質（ヒトα・プロテイン）を標識
し、ゲルろ過後の各フラクションのカウントが下記のような場合。）
・ 放射能量18.5 MBq / 5 µl

・ 測定日における実際の放射能量（壊変率表から求めた壊変係数） 0.977
・ 実験段階での総放射能量18.5×0.977＝18.1 (MBq)・ 標識反応後の全カウント

10,811 (cps)（この値が18.1 MBqに相当）

・ 標識されたタンパク質のカウント（全カウント）−（フリーの125I）＝10,811−5,199＝5,612 (cps)・ 標識効率(5,612 / 10,811)×100＝51.9 (%)

・ タンパク質に取り込まれた125Iの量

18.1×0.519＝9.4 (MBq)・ 比放射能（タンパク質の放射活性）/（使用したタンパク質量）＝9.4 / 2＝4.7 (MBq/µg)
・ ピーク（4番目）の放射活性の割合(2,874 / 5,612)×100＝51.2 (%)

・ ピークフラクションのタンパク質量 (51.2×2) / 100＝1.024 µg)
フラクション番号
1
2
3
4
5
6
7

cps
4
2874
1587
173
73

8
9
10

29
31
2094

11
12
13
14
15

1976
545
77
35
12

標識タンパク質の溶出ピーク

フリーの125I溶出

表2-4：各フラクションのカウント

45

I

125

レセプターアッセイ
レセプター（受容体）は、細胞膜や細胞質に存在していて、外界からの刺激、細胞間や細胞内の情報伝達に中心的な役割を果たします。レセプターの機能、働きの研究に欠かせないものがリガンド（Ligand）です。RI標識リガンドとレセプターとの結合（親和性）を定量する実験をレセプターアッセイ、あるいはレセプターバインディングアッセイ（受容体結合試験）とよびます。この目的に使用されるRI核種は3Hおよび125I です。どちらの核種にもメリットとデメリットがありますので、実験目的により使い分ける必要があります。
レセプターアッセイは、細胞あるいは膜画分をサンプルとして用いて、標識リガンドを加えてインキュベートした後に、サンプル中に含まれるレセプターと結合したRI標識リガンドの放射活性を測定する方法です。そのため、新薬の研究開発
では、オートメーション化してHTS（High Throughput Screening）にも応用されています。HTSにはγカウンタで放射活性を直接測定できる[125I]標識リガンドが適しています。[3H]の測定には試料をバイアルに移してシンチラントを加える操作が入るため、多量の検体を処理するのには適していません。
レセプターの解析（レセプターとの架橋実験）については50ページを参照してください。
■ 準備する試薬と機器 ■■ One Point advice ■■ プロトコール ■● 試薬

細胞を集め、結合バッファーで数回洗浄＊1・ [ I]標識リガンド↓に吸着しやすいので、ポリプロピレ

・ 未標識リガンド

段階希釈した標識リガンドを加える＊1ンなどのチューブを用いてください。

・ 結合バッファー↓インキュベーション

・ 洗浄バッファー↓ガラスフィルターでろ過＊2

＊2

↓洗浄操作

識リガンドの場合には、チューブを

γカウンタでカウントを測定

遠心し、上清を除いた沈殿のカウン

125

● 機器
・ ろ過装置[125I]標識リガンドは、ガラスなど

フィルターへの吸着が強い[125I]標トを測定します。

・ ガラスフィルター・ γカウンタ

リガンド濃度レセプターアッセイで使用するリガンドの濃度は非常に低いため（ペプチドではピコ（10-12）モル レベル）、チューブなどの実験器具への吸着に注意してください。特に、小スケールでアッセイを行う場合には、レセプターと結合していないフリーのリガンドがチューブの壁面などに吸着して実験誤差の原因になることがあります。
非特異的結合（NSB ; Non Specific Binding）
レセプターアッセイでは、RI標識リガンドがサンプル中のタンパク質などに非特異的に結合する量を必ず測定してください。これは、特異的結合のグラフ化や、用いた実験条件や試薬、[125I]標識リガンドに問題がないことを確認するために必須です。反応系に大過剰（[125I]標識リガンド量の100倍以上）の未標識リガンドを加えて反応させた後、カウントを測定します。非特異結合が少なければ、この値は小さくなります。
反応温度、時間
レセプターアッセイには、平衡に達する反応条件（温度、時間）を検討することが必須です。反応時間は、リガンド-レセ
プターの結合速度から決定されます。また、反応は4℃で行うのが一般的です。これは、37℃で反応すると、レセプターに結合したリガンドはインターナリゼーションやリサイクリングなどのプロセッシングを受けることがあるためです。したがって、細胞表層のレセプター数と若干異なる結果が得られます。4℃での反応が困難な場合には、代謝過程の阻害剤（アジ化ナトリウム、2-デオキシグルコースなど）を加えることもあります。

46

γ線
しゃへい：0.02 mm厚鉛板
モニタ：125I用シンチレーションサーベイメータ

参考資料
Scatchard解析

レセプターとリガンドとの結合は、種々の方法により解析されます。Rを受容体、Ｌをリガンドとしたとき、R+L⇔RLの平衡関係があります。ここで、解離定数をKdとすると
Kd=[R][Ｌ][RL]

が成立します。これを酵素反応速度論におけるミカエリス-メンテンの式と同様に変形させると
Bmax[L][RL]=
Kd+[L]
ここで、Bmax は最大結合量を表します。
レセプターアッセイは、標識リガンドを用いて [L] と [RL] との関係を測定して、この式からBmaxとKdを求めることです。一般的には、横軸に結合量、縦軸に結合量／濃度をとったグラフから求めます。結合様式が単一の場合にはグラフは直線になり、複数の場合では曲線になります。

B／F=

1（Bmax – B）
Kd

傾き=

結合量／濃度（B／F）

結合量／濃度（B／F）①と②の二つの結合がある場合の合成曲線

1
Kd

①＋②
①

Bmax

②
結合量（B）

結合量（B）

図2-21：レセプターの結合様式が単一の場合

図2-22：結合様式が複数の場合

標識リガンド 125I 標識リガンドはペプチドなどの高分子の化合物に、3H標識リガンドは低分子の化合物によく用いられます。しかし、ペプチドであっても、レセプターとリガンドの結合位置、RI標識が化合物の構造や分子量に大きな変化を与えて生物活性の変化が生じる場合には、125I 標識リガンドは使用できません。
125

I 標識リガンドはその比放射能が高いのが利点です。3H標識リガンドでは〜100 Ci/mmol程度の比放射能しか得られませんが、125I 標識リガンドはその20倍（2000 Ci/mmol）にもなるため、高感度なアッセイシステムを組むことができます。特にレセプターの数が少ない場合などでは、125I 標
識リガンドでなければ検出できません。
リガンドは、アゴニスト（agonist）とアンタゴニスト（antagonist）に分かれます。アゴニスト
はレセプターに結合して、そのレセプターの活性発現を引き起こします（作用薬）。一方、アンタ
ゴニストはレセプターに結合しますが、そのレセプターの活性発現を引き起こしません（拮抗阻
害薬・遮断剤）。アゴニストとアンタゴニストが混在するとアンタゴニストはアゴニストのレセプ
ターへの結合に影響を与えます。
参考文献
Scatchard. G, Ann. N. Y. Acad.Sci.,51,660 (1949)
Rothenthal, H. E., Anal. Biochem., 20, 525-532 (1967)
Bylund,D.B., Anal. Biochem.,159, 50-57 (1986)

47

I

125

弱エネルギーβ線
しゃへい：必要なし
サーベイ：スミア法でLSC測定

半

減

12.3年

期

放出放射線

弱エネルギーβ線（最大0.0186 MeV）

汚染の検出

スミア法―液体シンチレーションカウンタで測定

空気中の最大飛程
水中の最大飛程

6 mm
0.006 mm

しゃへい

特に必要なし● 放出β線のエネルギーがきわめて低いため、サーベイメータでの検出が困難です。スミア法で定期的に実験台等の汚染のモニタを行ってくだ
さい。
● 3H標識化合物を使用する場合は特にしゃへいを行う必要はありませんが、肌から吸収されやすいので必ず防護用手袋を着用してください。

特記事項● 外部からの被ばくは影響がないのですが、体内に取り込まれた3H標識化合物による内部被ばくに注意してください。
● ALI（年摂取限度）は対象となる3H標識化合物によって非常に差があります。
たとえばDNA前駆体の3H標識チミジンでは放射能が細胞の核に取込まれ集中することになるので、トリチウム水よりも影響が大きいと考えられます。

H-3(Tritium)

2-5. H-3 (Tritium)

3H2-5-1. プロトコール
細胞増殖（Cell Proliferation）の測定
遺伝子の発現を含め、目的物質が細胞に対してどのような効果があるかを研究するためには、細胞レベルでの実験を行う必要があります。それには以下のような実験が行われ、トレーサーとして [methyl -3H] チミジンが用いられます。
・ 細胞が刺激により増殖する・ 細胞が刺激により傷害を受け、死にいたる・ 細胞内器官、内容物が増加する
・ 遺伝子（DNA）が複製され、細胞が分裂・増殖する
・ 細胞の生物活性が増加する
チミジンは細胞膜を通過して細胞内へ取り込まれます。そして、細胞内でチミジンキナーゼの働きにより、TMP→TDP→
TTPと変換され、DNAに取り込まれるようになります。チミジンには、様々な標識位置の製品がありますが、細胞増殖の検出には[methyl-3H]チミジンが主に使用されています。
OCH3

図に示したチミジンの水素で、x位置が標識されている場合には、DNA伸長・合成の段階ではずれる

HN 3 452 16ので合成のモニタには使用できません。二重下線部分の標識水素原子がDNA合成のモニター実験に使用できますが、5-methyl基以外に標識が入っている場合、インキュベーション中に脱methyl化が起

5'

N

O

H

HOCH2 O

こりやすく、その結果、標識Deoxyuridineになってしまいます。これはPyrimidine phosphorylaseに

X

1'

H

よりRNA precursorとなりDNAには取り込まれません。methyl基には3つ水素があるので、比活性がH

高くできます。すなわち、検出感度が高くなります。以上のことから、細胞増殖の検出には[methyl-H
H

OH H 2'H]チミジンが最も多く使用されています。

3X

図2-23：チミジンの構造＜リンパ球幼若化試験の例＞■ 準備する試薬と機器 ■■ One Point advice ■■ プロトコール ■● 試薬

血液よりFicoll-Paque PLUSで、＊1・ 細胞培養用培地（RPMI-1640）

単核球を採取＊1

ください。

・ FCS

↓ RPMI-1640で3回洗浄

Ficoll-Paque PLUSの操作法につい・ Ficoll-Paque PLUS※↓ 0.1mlをマイクロプレートのウェルにては57ページを参照してください。

・ マイトゲン（PHA-P、ConAやPWMなど）
・ [methyl-3H]チミジン● 機器・ CO2インキュベーター
・ 平底マイクロプレート（細胞培養用）
・ 液体シンチレーションカウンタ（LSC）

分注

ヘパリン採血した静脈血を用いて＊2↓ マイトゲン添加、10 %FCS添加＊2

同一の系を3重測定して、その平RPMI-1640で全量を0.3 mlにする

均値を求めてください。また、コン↓ 5 % CO2インキュベーターで、37℃、

トロール（無刺激）実験を必ず行っ

72時間培養↓ [methyl-3H]チミジン7.4 kBqを添加↓ 6時間培養
洗浄後、LSCでカウント測定

48てください。

弱エネルギーβ線
しゃへい：必要なし
サーベイ：スミア法でLSC測定

参考資料
DNA合成量の測定方法[methyl-3H]チミジンを用いるとDNA合成量を直接測定することができます。細胞が増殖する場合、遺伝子（DNA）が必ず複製し、その複製したDNA量を測定することで真の細胞増殖を定量することができます。さまざまな生体内産生物質の評価のバイオアッセイ法としてこの方法が用いられています。また、RIを用いずにチミジンアナログのブロモデオキシウリジンをDNAに取り込ませ、
抗ブロモデオキシウリジン抗体で検出する方法もあります。
RIを使用せずに細胞増殖を検出する方法として、3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-2,5-diphenyl
tetrazolium bromideによる発色で検出するMTT法があります。細胞を培養しているウェルにMTTを添加し、吸光度計で測定する簡単な操作です。ただし、この方法は、生細胞の酵素活性を測定しているので、DNA合成量の直接測定で得られる結果と異なる場合があります。

[3H]チミジンの選択方法
RIカタログで、[3H]チミジン製品は10種類以上記載されています。どのチミジン製品が目的の実験に適しているかは、以下を目安に決めます。
1）DNA合成の測定：
・[methyl-3H]チミジンを選択
2）[methyl-3H]チミジンの比放射能選択：
・ 一般的には185〜925 GBq/mmol（製品自体、毎ロット同じ比放射能に調整されています）
・ DNA合成量が少ない細胞や、検出感度を高くしたい場合、2.22〜3.2 TBq/mmolを使用
3）スカベンジャー（エタノール）入りと水溶液の選択：
・ エタノールが細胞に影響を与える場合は水溶液（あるいは、使用前にエタノールを除去）
・ 一般的な実験には水溶液（比放射能185〜925 GBq/mmol）
アッセイ用の機器
細胞増殖測定はマイクロプレートやチューブを用いて実験を行いますが、最終的には液体シンチ
レーションカウンタ（LSC）でカウントを測定します。多数のサンプルについて、各ウェルから1つずつ液シンバイアルに移し、シンチラントを加え測定するのには、多大な手間と時間がかかります。セルハーベスタを用いてマイクロプレートごと洗浄を行い、さらにマイクロプレート用のLSCによりカウント測定するためのシステムも販売されています。詳細は各機器メーカーなどにお問い合わせください。
細胞増殖試験結果の解釈
3重測定を行ったカウントのばらつきが少なくなければなりません。10〜20 %以下を目安にしてください。また、コントロールが、2,000 cpm以下であることが必要です。マイトゲンによる刺激
では、通常10,000〜500,000 cpmが取り込まれます（細胞数105あたり）。
Stimulation Index（SI）は、［SI=取り込みのカウント / コントロールのカウント］で表されます。
参考文献
Cleaver, J. E., Thymidine Metabolism and Cell Kinetics, p43, North-Holland, Amsterdam (1967)
Feinendegen, L. E., Prospects and Problems in the application of isotopes to pure and applied cytology, Chapter 17, p769-821, in Radiotracer
Techniques and Applications, volume 2, edited by E. A. Evans, and M. Muramatsu, M. Dekker inc., New York (1977)

49

H

3

レセプターの解析
レセプター（受容体）は、細胞膜や細胞質に存在していて、外界からの刺激、細胞間や細胞内の情報伝達に中心的な役割を果たします。レセプターの機能、働きの研究に欠かせないものがリガンド（Ligand）です。RI標識リガンドをレセプターとの結合実験に用いる方法をレセプターアッセイあるいはレセプターバインディングアッセイ（受容体結合試験）とよびます。この目的に使用されるRI核種は3Hか125I です。どちらもメリットとデメリットがありますので、実験目的で使い分けてください。レセプターアッセイについては46ページを参照してください。
レセプターとリガンドを架橋試薬で複合体を作らせて検出する方法が、多くの研究分野で用いられています。受容体の分子量やサブユニット構造の解析など、多くの情報を得ることができます。架橋試薬で安定化した複合体を細胞膜から可溶化し、電気泳動で分離して検出します。

レセプターアッセイ
レセプターの数を測定

オートラジオグラフィー
組織上の局在をみる
＋架橋剤

可溶化

レセプター

電気泳動
リガンド

架橋実験による

レセプターの解析
図2-24：レセプター解析の方法■ 準備する試薬と機器 ■■ One Point advice ■■ プロトコール ■● 試薬

細胞を集め、結合バッファーで数回洗浄し、＊1・ [ H]標識リガンド

10 cells/ml程度に調製ため、バッファー中に血清やタンパ

・ 結合バッファー↓ 充分量の標識リガンドを添加＊3

ク質、Trisバッファーなどが混在す・ PBS↓ インキュベーション

ると架橋効率が低下します。

3

・ DSS（Disuccunimidyl suberate）
（架橋剤）

＊1

＊2

8

DSSは第一級アミノ基に反応する↓ PBSで2 回洗浄し、0.5 mlにする↓ 50 mM

DSS溶液25 µl加える＊2

細胞数を増やしすぎると、電気泳・ 可溶化試薬↓ 氷上で、30分インキュベーション・ 電気泳動試薬↓ 0.2 Mグリシンを加え、反応停止

・ グリシン↓ PBSで洗浄＊4＊3↓ 可溶化試薬を加え、氷上で5分静置

コントロール実験を必ず行ってくだ↓ 遠心分離さい。

● 機器
・ 電気泳動装置
・ X線フィルムと現像用具

動での解像度が悪くなります。

非標識リガンドを大過剰に加えた上清を電気泳動し、解析＊4（または、イメージアナライザー）

レセプターとリガンドの解離が早いことがありますので、できるだけ手早く行ってください。

50

弱エネルギーβ線
しゃへい：必要なし
サーベイ：スミア法でLSC測定

参考資料
架橋剤

架橋剤としては第一級アミノ基と反応するDSS（Disuccunimidyl suberate）がよく用いられています。他に、試薬内にジスルフィド結合を持ち、還元処理により開裂するDSP（Dithiobis
succinimidyl propionate）や、酸化処理により開裂するDST（Disuccinimidyl tartarate）などがあります。また、これらを水溶性にした誘導体も数多く開発されており、目的に応じて使い分けることができます。
光親和性標識リガンドがある場合には、非常に簡便な架橋が可能になります。これは、標識リガ
ンドとインキュベーションした後、たとえば紫外線を照射することで、レセプターとリガンドが結合します。インキュベーション後の架橋操作反応をせずに、可溶化と電気泳動を行えます。

レセプター
の精製

目的のレセプターが発見されたら、次の段階としてレセプターを単離・精製して様々な応用実験に用いることができます。レセプターはきわめて微量のため、均一精製標品を得るためには数万倍の濃縮精製が必要になります。そのために、特異的リガンドを結合したアフィニティーカラム
の開発が必須になります。この目的で用いられるリガンドには、レセプターアッセイに必要な能力に加えて、さらに結合能を壊すことなくマトリックスに結合できる化学的に修飾可能な反応基グループを持っていなければなりません。解離定数が10-8Mより小さい場合には、結合したレセプ
ターの活性を維持したまま溶出するのが困難な場合があります。

ゲルマトリクス

マトリクスの活性化

リガンドの固定
リガンド

活性化試薬
リ
ガ
ン
ド
の
固
定

ゲルマトリクス

リガンド固定ゲルとサンプルの混合

ターゲット分子結合分
離バッファー条件変更（pH、塩濃度、極性）

変性バッファー
pHの極端な変化
カオトロピック塩の添加
溶
出

リガンドの競合

基質の競合

図2-25：レセプター精製法

参考文献
Pilch, P. F., et al., Receptor Biochemistry and Methodology, vol.1,161 Alan R.Liss, Inc,New York (1984)

51

再構築

H

3

中エネルギーβ線
しゃへい：1 cm厚アクリル板
モニタ：GM管式サーベイメータ

半

減5,730年

期

エネルギー

中エネルギーβ線（最大0.156 MeV）

汚染の検出

薄窓GM管式サーベイメータ

空気中の最大飛程

24 cm
0.28 mm
1 cm厚アクリル板（3 mm厚程度までうすくてもよいが、水中の最大飛程
しゃへい

強度が不十分になる）

特記事項

ある種の有機化合物は手袋を通じて浸透します。また、使用時にCO2ガスとして吸引するのを防ぐために、CO2を生じないように注意してください。

Carbon-14

2-6. Carbon-14

14C

2-6-1. プロトコール
CATアッセイによるプロモーター活性の検討
レポータージーンアッセイとよばれる手法のうちのひとつです。遺伝子のプロモーターやエンハンサー領域の転写活性の解析に、また、そこに働く因子の影響をみるために、さまざまな

レポーター遺伝子を利用するシステムが用いられています。レポーターとして使用される遺伝子には、発現産物が簡単に、高感度に検出でき、発現産物の活性および類似の活性が導入する細胞中に存在しないことが求められます。以下のレポーター遺伝子がよく使用されています。
・ CAT（クロラムフェニコールアセチルトランスフェラーゼ）・ ルシフェラーゼ
・ GFP（Green Fluorescent Protein）
・ β-ガラクトシダーゼ・ GH（成長ホルモン）
CATは原核生物由来の酵素であるため、真核細胞由来のバックグラウンドの影響を受けずに酵素活性の測定が可能です。
1', 3'-ジアセチル化体
CAT遺伝子3'-アセチル化体
1'-アセチル化体

CATベクター

基質
CAT
TLCで分離細胞へ導入

一過性の発現細胞抽出液＋[14C] クロラムフェニコール
アセチルCoA

図2-26：CATアッセイ＜CATアッセイ＞■ 準備する試薬と機器 ■● 試薬
・ 0.25 M Tris-HCl, pH7.5・ 10 mMアセチルCoA
in 0.25 mM Tris-HCl, pH7.5・ [14C] クロラムフェニコール（25 µCi/ml）
・ タンパク質定量試薬
・ 酢酸エチル・ クロロフォルム/メタノール（95 : 5, v/v）
● 機器
・ 薄層クロマトグラフィー（TLC）プレート
・ 薄層クロマトグラフィー展開漕・ ボルテックスミキサー
・ ドライヤー・ 遠心エバポレーター
・ 真空ポンプ・ アスピレーター・ X線フィルムと現像装置（またはイメージアナライザー）■ プロトコール ■↓ 遠心エバポレーターで蒸発乾固

CATベクターへの遺伝子挿入↓ 20 µlの酢酸エチルで溶解↓↓ TLCプレートにスポット

細胞へのCATベクター導入↓ クロロホルム/メタノールで↓展開（プレートの先端0.5 cmま細胞抽出液の調製で展開）↓↓ TLCプレートを風乾CATアッセイ氷上で細胞抽出液25 µlに下記の↓ オートラジオグラフィー

試薬を加える

RIをカウントしてアセチル化率を0.25 M

Tris-HCl

112 µl10 mMアセチルCoA

8 µl[ C] クロラムフェニコール 5 µl
14

↓ 37℃、1時間↓ 1 mlの酢酸エチルを加える↓ ボルテックスで激しく攪拌（30秒間）↓ 上層（酢酸エチル）900 µlを
1.5 mlエッペンドルフチューブ
に移す

52

算出する
または、イメージアナライザーで画像を取り込み解析

中エネルギーβ線
しゃへい：1 cm厚アクリル板
モニタ：GM管式サーベイメータ

参考資料
導入効率

CATアッセイの成否は、CATプラスミドベクターの導入効率にかかっています。サンプル間のトランスフェクション効率の違いを補正するために、コントロールプラスミドを同時に導入することも行われます。また、導入するDNAに薬剤耐性マーカーなどを挿入しておき、その薬剤に耐性な細胞だけを使ってCATアッセイを安定して行うこともできます。CATプラスミドおよびプラス
ミドの導入には、さまざまな試薬、機器が市販されています。各製品の特長を理解して、最適なものを選んでご使用ください。

細胞抽出液の調製
CATは細胞抽出液として回収します。凍結-融解法によって細胞を破砕することで抽出液を回収します。界面活性剤を含むバッファー（Triton lysisバッファー）で抽出液を調製する例もあります。
細胞および実験系により回収量は異なります。そのため、抽出液中のタンパク質量を測定して、CATアッセイに用いる抽出液量を決めるようにしてください。または、いくつかの濃度（液量）
で試験的にアッセイしてから、適当な量を決めるのでも良いでしょう。

CATアッセイの実験例
1, 3-ジアセチル化体

3-アセチル化体
1-アセチル化体
クロラムフェニコール

TLCプレートオートラジオグラフィー
を確認しながら、左図赤枠中のスポットに相当する部分に印をつけます。
その部分をすべて一本のバイアルに集めて液体シンチレーションカウン
タで測定します。加えた全放射能（青い点線枠）との比からアセチル化率を算出します。イメージアナラ
イザーも同様に、枠中のスポット部
分の放射能を求めてアセチル化率を計算します。

原点

図2-27：CATアッセイのTLCでの展開例

基質濃度CATアッセイでは酵素活性を測定します。そのため、反応はCATのクロラムフェニコールに対するKm（12 µM）に近い基質濃度で行うようにします。上述のプロトコールでは、[14C] クロラムフェ
ニコールの比放射能を60 mCi/mmolとすると濃度は約13 µMになります。また、アセチル化率が50 %を超える場合、反応の直線性が失われる場合があります。その場合には、細胞抽出液量を減らすなどして、実験系を再度組み直してください。ひとつの目安として、1,3-ジアセチル体がはっきり検出される場合には注意してください。

アセチル化体 [14C] クロラムフェニコールのアセチル化体は3種類あります。そのため、スポットを取る場合にどうしても誤差が生じてしまう可能性があります。CATにより単一のアセチル化体だけを産生する
1-デオキシ[14C] クロラムフェニコールを用いると、結果の処理・解析が行いやすくなります。

2層分離法

上記の標準的なCATアッセイでは、TLCでのアセチル化体の分離が必須です。TLCでの分離を行わずに簡便に行える方法もあります。アセチル基供与体としてRI標識体（[3H] Acetyl CoA）を用いて、二層分離したサンプル中から有機溶媒層（シンチラント）にアセチル化クロラムフェニコールが移動することを利用した測定系です。有機溶媒層のカウントを測定してアセチル化率を算出することができます。
参考文献
CATアッセイ
Gorman, C. M. et.al., Mol. Cell. Biol., 2, 1044-1051 (1982)
CATのKmOldham, K. D., Radiotracer Techniques and Applications, vol.2, ch.18, 823-891, M.Dekker Inc., New York (1977)
Triton lysisバッファー
Ausubel, F. M. et.al., Current Protocols in Molecular Biorogy (1987)
1-デオキシ[14C]クロラムフェニコール
Murry, I. A. et.al., Nucl. Acids Res.,19, 6648 (1991)
二層分離の方法
German, C. M. et.al., Mol. Cell. Biol., 2, 1044-1051 (1982)

53

14

C

[14C] 標識2-DGを用いる局所脳グルコース利用率の測定[14C] デオキシグルコース（DG）法は、局所脳グルコース利用率（local
cerebral glucose utilization : LCGU）をオートラジオグラフィーにより計測し、脳の活動を画像的、定量的に測定する方法です。Sokoloffらにより

CH2OH
H

1977年に発表されました。
脳のニューロン活動はエネルギー消費を伴うので、脳の主要なエネルギー源であるグルコースの局所的な代謝状態を測定することにより、局所的

CH2OH
O

H
OH

H

H

H

H

OH

H

OH

O
H
OH

H

H

OH

OH

2-デオキシグルコース

H
OH

グルコース

脳活動の程度を知ることができます。2-Deoxy-D-[1-14C] glucoseはマクロ
オートラジオグラフィーに、2-Deoxy-D-[1-3H] glucoseはマイクロオート

図2-28：2-デオキシグルコースとグルコースの構造ラジオグラフィーによく用いられます。
2-デオキシグルコース（2-DG）は上記のようにグルコースの2位の炭素原子が脱酸素化したものです。グルコースと同一機
序で血液から脳組織へ運ばれ、最初の解糖段階としてヘキソキナーゼによりDG-6-リン酸へ代謝されます。しかし、次のス
テップのグルコースリン酸イソメラーゼでは代謝されません。そのため、DG-6-リン酸へ代謝されるのに必要な時間（通常45分間）以降に脳切片を作成してオートラジオグラフィーを行うと、その濃淡はDG-6-リン酸の濃度を反映します。すなわ
ち、解糖系の最初の段階における代謝の程度を表しています。この実験には動物を用いますので、実験動物の生理状態（血液、呼吸、循環、代謝など）が良好であり、またグルコース代謝が定常状態にあることが必要です。
グルコース

CH2OH
H
OH

CH2O―P
O

H
OH

H

H

OH

H

H

OH

OH

2-デオキシグルコース
CH2OH
H
OH

O
OH

H

H

H

OH

H

H

OH

H

OH

OH

OH

OH

CH2OH

OH

H

H

OH

OH

グルコースリン酸イソメラーゼ

CH2O―P

H

O

H

H

ヘキソキナーゼH

CH2O―P
O

O
H
OH

H

H

H

H
OH

図2-29：2-デオキシグルコースとグルコースの代謝■ 準備する試薬と機器 ■● 実験動物● 試薬
・ 2-Deoxy-D-[1-14C] glucose
・ 動物用麻酔薬■ One Point advice ■■ プロトコール ■
動物の準備

＊1

↓

オートラジオグラフィー用の標準線源で、数段階の異なる放射能濃度

生理状態のチェック↓のブロックが薄い1枚のフィルムになっています。

[14C] DGの静脈投与＊2● 機器↓ 経時的動脈血採血＊3＊2・ カテーテル↓ 45分後に屠殺し、脳を取り出す

ものを、3.7〜4.6 MBq/kg程度投与

・ 注射器↓ 急速凍結します。

・ 手術道具↓ 切片作成・ ミクロトーム

オートラジオグラフィー・ グルコース分析器（またはイメージアナライザーで解析）

的にモニターします（45分間に10・ 急速凍結装置

また、採血したサンプルを液体シンチ

回前後）。

・ [14C] マイクロスケール＊1※

レーションカウンタとグルコース分

・ X線フィルムと現像装置、析器で測定する

デンシトメータ（またはイメージアナライザー）

54＊3[14C] DGは1.85〜2.2 GBq/mmolのグルコース、[14C] DG濃度を経時

中エネルギーβ線
しゃへい：1 cm厚アクリル板
モニタ：GM管式サーベイメータ

参考資料（イメージアナライザーを用いると、
LCGUの計測 オートラジオグラフィーの結果をデンシトメータで解析します
フィルムをデンシトメータにセットし、露光から解析までを1台の測定機器で行うことができます）。
50〜100 µm径の脳組織の黒化度を測定します。あらかじめマイクロスケールなどの標準線源の黒化度を測定し、[14C]の量と黒化度との相関を求めてサンプル中の[14C]量を計算します。得られた脳組織中の[14C]量C1*(T) および経時的な動脈血漿中のグルコース濃度Cp(t) と[14C] DG濃度 Cp*(t) から、Sokoloffらの式によりLCGU値（R）を計算します。単位はµmol / 100 g･minが用いられます。

C1*(T ) - K1*e- (K2* + K3*) T ∫0 C P*(t ) e (K2* + K3*) t dt
T

R=

LC[∫T (CP* (t ) / C P(t )) dt -e- (K2* + K3*) T ∫T CP*(t ) / CP (t))e (K2* + K3*) t dt ]00

Tは[14C] DGを静脈注射してから屠殺するまでの時間、tは各採血の時刻、K1*, K2*, K3*, Lcは定数で、Sokoloffらの文献から以下のようになります。
ラット

サル

灰白質

白質

灰白質

白質

K1*

0.189

0.079

0.189

0.079

K2*

0.245

0.133

0.245

0.133

K3*

0.052

0.020

0.052

0.020

Lc

0.483

0.344

表2-5：LCGU計算のための定数

マイクロスケール
一般的な較正用線源では1つの単位が大きすぎ、放射能標準としてオートラジオグラフイー用に使えません。マイクロスケールは、スライドガラスに載せられる大きさの中に、8〜10種類の異なる
放射能濃度のブロックが設けられています。サンプルと一緒に露光させるだけで、同じフィルム
上に記録されます。
[14C] Microscales
RPA504※

RPA511※

kBq/g

nCi/g

Bq/g

nCi/g

31.89

862

3635.0

98.26

25.90

700

1793.0

48.46

19.39

524

888.7

24.02

12.91

349

352.6

9.53

8.55

231

177.2

4.790

4.44

120

87.21

2.357

2.18

59

33.63

0.909

1.11

30

16.02

0.433

9.29

0.251

3.70

0.100

参考文献
Sokoloff, L., et al., J.Neurochem., 28, 897 (1977)
Kennedy.C., et.al., Ann. Neurol., 4, 293 (1978)

55

14

C

γ線
51
しゃへい：3 mm厚鉛板
モニタ：シンチレーションサーベイメータ

Cr

放出放射線

27.7日
0.32 MeVγ線（9.8 %）5 KeV X線（22 % V-51 kX線）

汚染の検出

シンチレーションサーベイメータ線

1 GBq点線源から1 mの距離で4.7 µSv/時（0.47 mrem/時）
3 mm厚鉛板で半減

半

減

期

量

しゃへい

51

Cr

days
0
7
14
21
28
35
42
49
56
63

Chromium-51
0
1.000
0.839
0.705
0.591
0.496
0.417
0.350
0.293
0.246
0.207

1
0.975
0.819
0.687
0.577
0.484
0.406
0.341
0.286
0.240
0.202

2
0.951
0.798
0.670
0.562
0.472
0.396
0.333
0.279
0.234
0.197

T1/2 : 27.7days
3
0.928
0.779
0.654
0.549
0.460
0.386
0.324
0.272
0.229
0.192

4
0.905
0.759
0.637
0.535
0.449
0.377
0.316
0.266
0.223
0.187

5
0.882
0.741
0.622
0.522
0.438
0.368
0.309
0.259
0.217
0.182

6
0.861
0.722
0.606
0.509
0.427
0.359
0.301
0.253
0.212
0.178

Chromium-51

2-7. Chromium-51

2-7-1. プロトコール
細胞傷害性試験（Cytotoxic Assay / Test）
標的細胞に細胞表面抗原に対する抗体を反応させ、さらに補体を作用させると細胞膜が破壊されて細胞の傷害（細胞死、細胞融解など）が引き起こされます。この傷害の程度を簡便に測定するために51Crが用いられます。
標的細胞[51Cr]-クロム酸ソーダ

刺激（エフェクター細胞、薬剤等）

溶解または死滅した細胞からのみ、[51Cr]-クロム
酸ソーダの放出がおこる。

標的細胞と[51Cr]クロム酸ソーダを混合培養する。

洗浄し、取り込まれなかったRIを除く。

刺激を加え、培養する。

遠心分離し、上層
または下層の放射活性を測定。

図2-30：細胞傷害性試験＜NK細胞活性の測定＞■ 準備する試薬と機器 ■■ One Point advice ■■ プロトコール ■● 試薬

末梢血リンパ球の採取＊1・ Ficoll-Paque PLUS※

Ficoll-Paque PLUSによる密度勾配遠心でください。Ficoll-Paque PLUSの操作

・ 培養液（FCS添加RPMI-1640）

血液から単核球を採取＊1し、RPMI-1640培

は次ページを参照してください。

・ [ Cr] クロム酸ソーダ

地で3回洗浄する

51● 機器
・ CO2恒温槽
・ 冷却遠心器・ γカウンタ・ 培養用チューブK562細胞＊2の標識
5×106株化培養細胞 / 200 µl培養液＊2

ヘパリン採血した静脈血を用いて

ここでは標的細胞としてNK細胞に感受性の高いK562株を用いました。

↓ [51Cr] クロム酸ソーダを3.7 MBq加える↓ 37℃、2時間培養↓ 1,000 rpmで5分間遠心し、上清を捨てる↓ 培養液で3回洗浄
2×105細胞 / mlに調製[51Cr] クロム放出実験
マイクロプレートに、[51Cr] クロム標識細胞を50 µl入れる↓ 段階希釈したリンパ球を100 µl加える＊3＊3リンパ球と標的細胞の割合は、標↓ プレートを1,000 rpmで5分間遠心する的細胞に対してリンパ球を1〜50倍↓ 4〜8時間培養の範囲で実験を行います。

各ウェルから100 µl取り、
γカウンタで測定

56

γ線
51
しゃへい：3 mm厚鉛板
モニタ：シンチレーションサーベイメータ

Cr

参考資料
Ficoll-Paque PLUSによるリンパ球の分離方法
血液（2ml）を同量の平衡塩溶液で希釈

血漿
血小板
遠心（60〜100×g）

上層除去
リンパ球
Ficoll-Paque

Ficoll-Paque (3ml)
顆粒球
赤血球
図2-31：Ficoll-Paque PLUSによるリンパ球分離

細胞依存性細胞傷害反応の例
種類

誘導因子

エフェクター細胞

特異性
エフェクター細胞

標的細胞

同種細胞抗原誘導

アロ抗原

T細胞

特異的

特異的

ウイルス誘導

ウイルス

T細胞

特異的

特異的

腫瘍特異的抗原誘導

腫瘍特異移植抗原、腫瘍関連抗原

T細胞
armed

特異的

特異的

マイトゲン誘導

PHA

T細胞

非特異的

非特異的

ADCC

標的細胞に特異的に結合している
IgG, IgM抗体

K細胞
T細胞
多核白血球
マクロファージ

非特異的

特異的
抗体依存

NK

インターフェロン、
ウイルス等

NK細胞

非特異的

選択的

LAK

インターロイキン-2

T細胞
NK細胞

非特異的

選択的

macrophage

表2-6：細胞傷害反応

リンパ球混合培養試験（Mixed lymphocyte reaction； MLR）は、T細胞が抗原によって刺激されてリンパ球混合培養試験 増殖を起こす、いわゆるリンパ球幼若化反応の特殊な例で、MHC-complexの異なった同種抗原を（MLR）認識して反応します。たとえば、ヒトまたはマウスではHLAまたはH‐2 complexの異なる2種のリンパ球を混合培養すると、やがてリンパ球は芽球化反応を起こすようになります。一卵性双生児
または同一近交系マウス間同士で普通は反応がおこりません。すなわち、同種抗原の相違をT細胞が認識して反応したものと考えられます。この実験では、[3H] チミジンの取り込みで増殖能を測定し、[51Cr] クロムを用いて細胞障害性試験を合わせて行ないます。

赤血球、
血小板の
寿命

細胞障害性を測定するのと同じく、[51Cr] クロムを用いて赤血球、血小板の寿命測定も行われます。
動物から採血した血液より赤血球と血小板を分離して、それらを[51Cr] クロムで標識した後で再度動物に投与して、標識された赤血球や血小板が時間変化によりどのように減少していくかをみるものです。赤血球には59Fe、血小板には111In（111In-oxineや111In-troporon）などのRIも標識に使用さ
れます。
【注意】
研究用RIは臨床の核医学診断に用いることができません。診断目的には絶対に使用しないで
ください。
参考文献
Brunner, K. T., et al., Immunology, 14,181 (1969)
免疫実験操作法（右田ら編）、南江堂 （1995）57

−データ集−3-1 DNA／RNA .................................................................................58
3-2 バッファー／溶液の調製法 ........................................................60
3-3 標識化合物関連データ................................................................61

chapter.3

第3章

3-1. DNA／RNA
コドン暗号表2番目の塩基

１
番
目
の
塩
基

U

C

A

G

U

UUU PheUUC PheUUA LeuUUG Leu

UCU Ser
UCC Ser
UCA Ser
UCG Ser

UAU Try
UAC Tyr
UAA stop (och)UAG stop (amb)UGU Cys
UGC Cys
UGA stop (opal)
UGG Trp

U
C
A
G

C

CUU Leu
CUC Leu
CUA Leu
CUG Leu

CCU Pro
CCC Pro
CCA ProCCG ProCAU HisCUC HisCAA Gln
CAG Gln

CGU Arg
CGC Arg
CGA Arg
CGG Arg

U
C
A
G

A

AUU IleAUC IleAUA IleAUG Met start

ACU Thr
ACC Thr
ACA Thr
ACG Thr

AAU Asn
AAC Asn
AAA Lys
AAG Lys

AGU Ser
AGC Arg
AGA Arg
AGG Arg

U
C
A
G

G

GUU ValGUC ValGUA ValGUG Val (Met)GCU Ala
GCC Ala
GCA AlaGCG AlaGAU Asp
GAC AspGAA GluGAG GluGGU Gly
GGC Gly
GGA Gly
GGG GlyU
CA
G* 塩基はリボヌクレオチドで表記しています。GUGは通常バリンをコードしますが、開始コドンのメチオニンをコードする場合もあります。

アミノ酸の略号表記と分子量

単位換算表

アミノ酸

3文字
表記

1文字
表記

分子量

アラニン
Alanineアルギニン
Arginine
アスパラギン
Asparagine
アスパラギン酸 Aspartic acid
アスパラギン／アスパラギン酸
Asparagine／Aspartic acid
システイン
Cysteine
グルタミン
Glutamine
グルタミン酸Glutamic acidグルタミン／グルタミン酸
Glutamine／Glutamic acid
グリシン
Glycine
ヒスチジン
Histidine
イソロイシン
Isoleucine
ロイシン
Leucine
リジン
Lysineメチオニン
Methionine
フェニルアラニン Phenylaranine
プロリン
Proline
セリン
Serineトレオニン
Threonine
トリプトファン Tryptophan
チロシン
Tyrosine
バリン
Valine

Ala
Arg
Asn
Asp
Asx

A
R
N
D
B

89.1
174.2
132.1
133.1
-

Cys
Gln
Glu
Glx

C
Q
E
Z

121.2
146.1
147.1
-

Gly
His
Ile
Leu
Lys
Met
Phe
Pro
Ser
Thr
Trp
Tyr
Val

G
H
I
L
K
M
F
P
S
T
W
Y
V

75.1
155.2
131.2
131.2
146.2
149.2
165.2
115.1
105.1
119.1
204.2
181.2
117.1

58

1 kg (kilogram)
1 g (gram)
1 mg (milligram)
1 µg (microgram)1 ng (nanogram)1 pg (picogram)1 fg (femtogram)

=
=
=
=
=
=
=

103 g
1g
10-3 g10-6 g10-9 g10-12 g
10-15 g

３
番
目
の
塩
基

溶液中のDNA溶液
二本鎖DNA（50 µg/ml）

分子数/ml

モル/ml

モル濃度

末端モル濃度

Bacteriophage λpBR322
pUC18/pUC19
Segment of DNA (1 kb)
Octameric double-stranded linker

9.78 × 1011
1.09 × 1013
1.77 × 1013
4.74 × 1013
5.92 × 1015

1.62 × 10-12
1.81 × 10-11
2.94 × 10-11
7.87 × 10-11
9.83 × 10-9

1.6 nM
18.1 nM
29.4 nM
78.7 nM
9.8 µM

3.24 nM
36.2 nM
58.8 nM
157.4 nM
19.7 µM

50 µg/mlの二本鎖DNA溶液の吸光度はA260=1.0になります。37 µg/mlの一本鎖DNA溶液の吸光度はA260=1.0になります。これらの濃度はDNA
塩基対の分子量を660で計算した値に基づいています。

ヌクレオチド溶液の濃度決定

オリゴヌクレオチドの濃度計算

ヌクレオチド溶液の濃度は次の式から求めることができます。

N ＝ オリゴヌクレオチドの塩基数ε260 ≒ 104×N (M-1 cm-1)
m ≒ 324.5 g/mol × N
A260/ε260 × 106 ＝ 濃度（µM）
濃度（µM）× m ＝ 濃度（ng/ml）

Measured absorbance at λmax for the nucleotide= Molar concentration
Absorbance at λmax for a 1 M solution of the nucleotide

二本鎖DNAの分子量と末端モル数の計算
二本鎖DNAの分子量 = (# of bp) × (649 g/mol/bp)
直鎖状DNAのモル量 = 2 × (g of DNA) / (# of bp) × (649 g/mol/bp)
制限酵素消化によるDNA末端のモル量：直鎖状DNA = (# of cuts) ×(moles of DNA) × 2 (ends per cut) ＋2 (ends of linear DNA) × (moles of DNA)
環状DNA = (# of cuts) ×(moles of DNA) × 2 (ends per cut)

核酸の分子量
デオキシリボヌクレオチドの平均分子量
1塩基対の平均分子量
リボヌクレオチドの平均分子量
1 kb of dsDNA (sodium salt)
1 kb of ssDNA (sodium salt)
1 kb of ssRNA (sodium salt)
1 × 106 g/mol of ds DNA (sodium salt)
λDNA
pBR322 DNA
φX-174 DNA
E. coli DNA
28S rRNA
23S rRNA (E. coli)
18S rRNA
18S rRNA (Yeast)
16S rRNA (E. coli)
5S rRNA (E. coli)tRNA (E. coli)

=
=
=
=
=
=
=
=
=
=
=
=
=
=
=
=
=
=

324.5 g/mol
649.0 g/mol
340.5 g/mol
6.5 × 105 g/mol
3.3 × 105 g/mol
3.4 × 105 g/mol
1.54 kb
3.1 × 107 g/mol
2.8 × 106 g/mol
3.6 × 106 g/mol
3.1 × 109 g/mol
1.6 × 106 g/mol
1.2 × 106 g/mol
6.1 × 105 g/mol
6.1 × 105 g/mol
5.5 × 105 g/mol
3.6 × 104 g/mol
2.5 × 104 g/mol

分子量からモルへの換算
1 µg/ml of DNA
1 µg/ml of a 1 kb DNA fragment
1 µg of a 1 kb DNA fragment
1 µg of a 1 kb DNA fragment
1 pmol of a 1 kb DNA fragment
1 µg of pUC18/19 DNA (2,686 bp)
1 pmol of pUC 18/19 DNA
1 µg of pBR322 DNA (4,361 bp)
1 µg of linear pBR322 DNA
1 pmol of pBR322 DNA
1 pmol of 5'-ends of linear pBR322
1 µg of M13mp18/19 DNA (7,249 bp)
1 pmol of M13mp18/19 DNA
1 µg of λDNA (48,502 bp)
1 pmol of λDNA

=
=
=
=
=
=
=
=
=
=
=
=
=
=
=

3.08 µM phosphate
3.08 nM 5'-ends
1.5 pmol = 9.1×1011 molecules
3.0 pmol 5'-ends
0.65 µg0.57 pmol = 3.4×1011 molecules
1.77 µg0.35 pmol = 2.1×1011 molecules
0.70 pmol of 5'-ends
2.83 µg
1.4 µg0.21 pmol = 1.3×1011 molecules4.78 µg0.033 pmol = 1.8×1010 molecules
32.01 µg593-2. バッファー／溶液の調製法
バッファー／溶液の調製方法
溶液

容量

試薬

調製法

保存
温度

備考

1 M DTT

10 ml

1.54 g Dithio threitol

分注保存して凍結融解を避け
10 mlの10 mM酢酸ナトリウムバッファー-20℃ る。(1,4-dithio-DL-threitol,（pH 5.2）に溶解してろ過滅菌する。
MW=154.25)

5 M 酢酸アンモニウム

100 ml38.54 g NH4OAc

80 mlのH2Oに溶解し、100 mlにメスアップした後、オートクレーブ滅菌する。

室温(NH4OAc, MW=77.08)

3 M 酢酸ナトリウム100 ml40.82 g NaOAc･3H2O

80 mlのH2Oに溶解し、氷酢酸でpH 5.2に調整した後、100 mlにメスアップしてオートクレーブ滅菌する。

室温(NaOAc･3H2O, MW=136.08)

1 M 塩化カルシウム

100 ml21.9 g CaCl2･6H2O

80 mlのH2Oに溶解し、100 mlにメスアップした後、オートクレーブ滅菌する。

室温(CaCl2･6H2O, MW=219.08)

0.5 M EDTA pH 8.0

100 ml18.61 g Na2･EDTA

80 mlのH2Oに溶解し、NaOHでpH 8.0に調整した後、100 mlにメスアップしてオート
クレーブ滅菌する。

室温

酸性条件下では完全に溶解しない。(Na2･EDTA･2H2O,
MW=372.24)

1 M 塩化マグネシウム

100 ml20.33 g MgCl2･6H2O

80 mlのH2Oに溶解し、100 mlにメスアップした後、オートクレーブ滅菌する。

室温(MgCl2･6H2O, MW=203.31)

5 M 塩化ナトリウム100 ml29.22 g NaCl

80 mlのH2Oに溶解し、100 mlにメスアップした後、オートクレーブ滅菌する。

室温

溶解しにくいので長時間撹拌する。(NaCl, MW=58.44)

1 M Tris-HCl

100 ml12.14 g Tris (hydroxymethyl)aminomethane

80 mlのH2Oに溶解し、HClでpHを調整した
後、100 mlにメスアップしてオートクレー
ブ滅菌する。

室温

温度によりpHは大きく変動する。(Tris, MW=121.14)

0.1 M IPTG

50 ml

1.19 g Isopropyl
b-D-thiogalactopyranosid

分注保存して凍結融解を避け
40 mlのH2Oに溶解し、50 mlにメスアップ-20℃
した後、ろ過滅菌する。
る。(IPTG, MW=238.3)

10 % SDS

100 ml10 g Sodium dodecyl sulfate

90 mlのH2Oに溶解し、HClでpHを中性に調整した後、100 mlにメスアップする。

室温

秤量の際、吸引を避けるためにマスクをする。

500 g Trichloroacetic acid

227 mlのH2Oを加える。

4℃

500 gのTCAが入ったボトルにH2Oを直接加える。

8.0 g
0.2 g
2.68 g0.24 g

80 mlのH2Oに溶解し、HClでpH 7.4に調整した後、100 mlにメスアップしてオートクレーブ滅菌する。

室温

800 mlのH2Oに溶解し、HClでpH7.0に調整した後、オートクレーブ滅菌する。

室温

100 % (W/V) TCA

NaCl
KCl
Na2HPO4･7H2O
KH2PO4

10×PBS

100 ml20×SSC

1,000 ml175.3 g NaCl
88.2 g Sodium citrate･2H2O

100×デンハルト溶液

500 ml10 g Ficoll PM 400※
10 g Polyvinilpyrrolidone
10 g Bovine serum albumin

10×TBE (Tris-borate)

1,000 ml107.8 g Tris
55.6 g Boric acid
40 ml 0.5 M EDTA pH 8.0

50×TAE (Tris-acetate)

1,000 ml242.3 g Tris
100 ml 0.5 M EDTA pH 8.0
57.1 ml Glacial acetic acid

10×MOPS

1,000 ml41.85 g4-morpholinepropanesulfonic acid6.80 g NaOAc･3H2O

800 mlのDEPC処理水に溶解し、20 mlの
室温
0.5 M EDTA（DEPC処理水で調製）を加遮光
えて、10 M NaOHでpH 7.0に調整する。
保存
DEPC処理水で1,000 mlにメスアップする。

30.28 g Tris
144.11 g Glycin
10.0 g SDS

800 mlのH 2Oに溶解し、1,000 mlにメスアップする。

10×SDS-PAGEバッファー 1,000 ml

IPG DryStrip※膨潤液25 ml

TEバッファー pH 8.0

100 ml

飽和フェノール

DEPC処理水

100 ml12.06 g0.5 g
70 mg
125〜500 µl

Urea
CHAPS
DTT
IPG buffer※
BPB（微量）300 mlのH2Oに溶解し、500 mlにメスアッ-20℃プした後、分注保存する。
900 mlのH2Oに溶解し、40 mlのEDTA溶液を加え、1,000 mlにメスアップする。

Ficoll PM 400 :code 17-0300-10 (100 g)
code 17-0300-50 (500 g)

室温

上清液の色が黄色に変色したら廃棄して、再度調製し直す。
(MOPS, MW=209.27)

室温

20 mlのddH2Oに溶解し、25 mlにメスアッ-20℃ (Urea, MW=60.06)
プして小分け分注して保存する。
98.8 mlのH2Oに左記溶液を加えて、オート
クレーブ滅菌する。

室温

100 gのPhenolに100 mlの1 M Tris溶液を加えて溶解し、上清を除去する。
100 mlの100 mM Tris pH 8.0溶液を加えて撹拌し、上清を除去する。上清のpHが中性になるまで操作を繰り返す。

4℃
遮光
保存

上清液の色が変色したら廃棄
して、再度調製し直す。
Phenolは腐食性の毒性物質。
取り扱いにはグローブと安全メガネを着用する。

100 mlの溶液に0.1〜0.2 ml のDiethylpyrocarbonate (DEPC)をドラフト中で加えて激しく撹拌する。一晩放置した後、オートクレーブして残存するDEPCを不活化する。アミノ基を含む溶液（Tris, MOPS, EDTA, HEPESなど）はDEPC処理できない。これらの溶液はDEPC処理水を用いて調製する。

室温

DEPCは発ガン性が疑われる有害物質。取り扱いにはグローブと安全メガネを着用し、ドラフト内で操作する。

1 ml 1M Tris-HCl pH 8.0
0.2 ml 0.5M EDTA pH 8.0

60

3-3. 標識化合物関連データ
国際単位系（SI）における放射能の単位はベクレル（becquerel：Bq）で、1秒当たりの壊変数に相当し、キュリー（Ci）との関係は下記の通りです。
1 Bq = 1壊変／秒 = 2.7×10-11 Ci
1 mCi = 3.7×107 Bq = 37 MBq
10
1 Ci = 3.7×10 Bq = 37 GBq
1 µCi = 3.7×104 Bq = 37 kBq

ベクレル／キュリー換算表
kBq
MBq
GBq

3.7

7.4

9.25

11.1

14.8

18.5

37

74

92.5

111

148

185

222

259

296

333

370

444

555

740

925

µCi
mCi
Ci

0.1

0.2

0.25

0.3

0.4

0.5

1

2

2.5

3

4

5

6

7

8

9

10

12

15

20

25

MBq
GBq
TBq

1.11

1.48

1.85

2.22

2.59

2.96

3.33

3.7

4.63

5.55

7.4

9.25

11.1

14.8

18.5

22.2

25.9

28.8

29.6

33.3

37

µCi
mCi
Ci

30

40

50

60

70

80

90

100

125

150

200

250

300

400

500

600

700

750

800

900

1000

比放射能の決定
標識化合物の比放射能は通常、全放射能量と放射能を持った物質の質量から求めています。
しかし、まれにBarium [14C] carbonateやトリチウム水のような前駆体の比放射能から計算によって求めることもあります。
比放射能とは、放射性核種を含んでいる化合物一定量当たりの放射能で表わされ、キロベクレル／ミリグラム（kBq/mg）やキロベクレ
ル／ミリモル（kBq/mmol）などと表記されます。

アイソトープ実験に必要な比放射能
アイソトープ実験に必要な比放射能は、必要とする化合物の質量と放射能量によって決まります。
比放射能（kBq/mmol）=

全放射能量（kBq）×分子量
質量（mg）

標識化合物の濃度は次式で計算されます。
濃度（mmol/ml）=

放射能濃度（kBq/ml）
比放射能（kBq/mmol）

61=

放射能濃度（kBq/ml）
濃度（mmol/ml）

RI取扱い10か条の鉄則（10ゴールデンルール）
RI標識化合物安全使用のための3原則（3C）
RI標識化合物安全使用のための3原則（3C）
放射性物質をできるだけ狭い空間にとじこめ、広がらないようにする
利用する放射線、放射能の量を必要最小限にし、効果的に利用する
放射性物質の購入、使用、廃棄などを適切に管理する● 危険性の認識および安全取扱い技術の習得● 適切な実験衣や防御用器具と外部被ばく線量計の装着

・必ず手袋など適切な保護具を着用する。口で吸い上げるピ・実験中は必ず専用の実験衣、防護めがね、手袋などを着用

ペットなどでRI標識化合物を取り扱わない。

する。

・RI放射性化合物は適切な条件で保存する。

・実験中は個人外部被ばく線量計を指定された位置に装着

・すべての容器には核種、化合物名、総放射能量、比放射能、する。

使用期日や使用者などの必要事項を明記する。
・容器は確実に密閉する。

● 汚染確認のため定期的に実験区域周辺をモニタ・汚染があったら、指定された緊急措置を確実に行う。

● 取扱い時間を最小限にする実験計画の作成

1）付近にいるすべての人に知らせる。

・実験マニュアルを再確認し、充分なコールド実験を行

2）汚染区域の立ち入りを制限する。

い放射性化合物取扱いの時間、

3）放射線管理担当者、放射線取扱主任者等に連絡

操作回数が最小限で行えるようにする。

し、指示をあおぐ。
4）実験者が中心となり除染を行う。
5）マニュアルにしたがって除染作業を行う。

● 放射線源からの適切な距離
・放射線量は逆二乗の法則で、距る。実験器具、容器の配置を検● RI実験施設の規則や安全な作業法の遵守討して、最適な位置にRI標識化

・飲食、喫煙、化粧その他RI標識化

離が2倍になると量は1/4にな合物を体内に摂取する可能性のある合物を置くようにする。

行為は決して行わない。
・実験室内ではハンカチなどは使用
せず、ペーパータオルを使用して随● 各放射線に適したしゃへい
物の使用時廃棄する。

・厚さ1 cmのアクリル板は全てのβ線をしゃへいする。高エネルギーβ線につ● 放射性廃棄物を最小にする実験系の構築と、生じた廃棄物を適切に処理し長時間貯めない

いては生じる制動放射線に注意する。
・γ線やX線には適当な厚さの鉛板または鉛入り・RI標識化合物は実験に必要な最少量を用いる。

アクリル板を使用する。

・放射性廃棄物は規則にしたがって分類し、適切な廃棄処理をする。
・放射性廃棄物の量を確認して記録する。

● RI標識化合物使用区域の制限
・RI実験施設内で使用するのはもちろん、実験室内もさらにRI
標識化合物を使用する区域を特定して、その他の区域と区別● 実験終了後、汚染の有無の確認。手洗い、再度モニタ、汚染が無いことの確認する。
・すべてのRI標識化合物の取扱いはフード内で行うことを基本

・実験施設から外部に出る場合は必ず念入りにモニタする。

とする。

・汚染が見つかった場合には、すみやかに放射線管理担当者に・トレイおよび吸収材などを敷き、実験終了後または汚染除去

連絡し、指示を受ける。

時に確実に処理清掃できるようにしておく。

※放射線障害防止法で認められた少量のRIを管理区域外に持ち出して使用する場合は、使用施設の放射線取扱主任者の指示に従ってください。

62

Trademarks;
Ficoll, Ficoll-Paque, ImageQuant, Imobiline, IPGphor, Megaprime, ProbeQuant and STORM are trademarks of GE Healthcare Bio-Sciences or its subsidiaries.
Atlas is a trademark of Clontech Laboratories, Inc. (TAKARA Bio Company)
Iodo-gen is a trademark of Pierce Chemical Company.
本書記載製品の販売会社（2006年4月現在）
GEヘルスケア バイオサイエンス株式会社： Amplify、Ficoll-Paque Plus、Ficoll PM400、IPG buffer、IPG DryStrip、Megaprime DNA標識キット、
PhosphoScreen、ProbeQuant G-50 Micro Culumns、Rabbit Reticulocyte lysateシステム、β-Safety Screen、
125

I-Safety Screen、STORMシステム、細胞標識用メチオニン、マイクロスケール、

Clontech（タカラバイオ株式会社）： Atlas cDNA Expression Arrays

PIERCE社： IODO-GEN

63

MEMO

ラジオアイソトープ利用ガイドブック− Radioisotopes for Life Science Research −編集および発行

GEヘルスケア バイオサイエンス株式会社〒169-0073 東京都新宿区百人町3-25-1 サンケンビルヂング
TEL :（03）5331-9336
FAX :（03）5331-9370
Internet Home Page : http://www.gehealthcare.co.jp/lifesciences©2006 GEヘルスケア バイオサイエンス株式会社
本書の全部または一部を無断で複写複製することは、著作権法上での例外を除き、禁じられています。

www.gehealthcare.co.jp/lifesciences

掲載されている製品は試験研究用以外には使用しないでください。
掲載されている内容は、予告なく変更される場合がありますのであらかじめご了承ください。
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