Consejos y Técnicas en

Preanalítica

1

Prof. Dr. Ralf Lichtinghagen

PrefacioEl Prof. Dr. Ralf Lichtinghagen obtuvo su doctorado despuésde estudiar química y biología en Ruhr, Universidad de Bochumen el campo de la neurobioquímica. A comienzos de 1990
inició estudios adicionales en la facultad de medicina deHannover para licenciarse en Bioquímica/Especialista europeo
en laboratorio médico (EuSpLM). Consiguió autorización paraenseñar bioquímica en la universidad y actualmente trabaja
como jefe de bioquímica en el laboratorio central de la facultad
de medicina de Hannover. Además de estas responsabilidades en el cuidado delpaciente y la investigación, también imparte conferencias en cursos de medicina
sobre química clínica / diagnóstico de laboratorio.

El folleto “Consejos y Técnicas en Preanalítica” está especialmente destinado adoctores en medicina, proveedores de sanidad, enfermería y personal clínico.

También es jefe académico de auxiliares de laboratorio médico. Dentro de lasociedad de medicina del laboratorio (‘DGKL’) organiza cursos de revisión sobre
química clínica para cientíﬁcos especializados sometidos a la formación continua ypara los médicos en formación. Sus principales áreas de investigación en el instituto
clínico de la facultad de medicina de Hannover son el diagnóstico molecular y losnuevos marcadores biológicos.

Trabajando con este folleto el lector adquirirá una visión general de aspectos muy
diferentes de la preanalítica.
Las secciones relativas a los materiales de extracción de sangre están
especialmente diseñadas para el uso de sistemas Sarstedt (S-Monovette®,
Microvette®, Minivette®, etc.) y, después de su familiarización será más sencillo
utilizar las técnicas de extracción descritas, especialmente para nuevos usuarios.
Como clínico químico conozco especialmente la importancia de los aspectos
pre-analíticos en el proceso como un todo – desde la petición del laboratorio y latoma de muestra hasta la interpretación de los resultados. Después de todo, lapreanalítica tiene una gran importancia en la gestión de calidad del laboratorioclínico.
El trabajo sin errores en el laboratorio de diagnóstico solo es posible si los factoresde inﬂuencia e interferencia se tienen en cuenta de forma estricta. Este folleto estáparticularmente destinado a los colegas clínicos sensibilizados por este tema. Son
quienes con su capacidad como clientes del laboratorio de diagnóstico, tienen una
gran contribución, asegurando que el proceso como un todo se realiza con lasmenores interferencias posibles, realizando una toma de muestra correctamente.

Prof. Dr. Ralf Lichtinghagen23Índice
1
1.1
1.2
1.3

¿En qué consiste la fase preanalítica?
Importancia de los resultados de laboratorio
Consecuencias frecuentes de los errores en preanalítica
El factor de éxito de la comunicación

2
2.1
2.1.1
2.1.2
2.2

Variables y factores que alteran los resultados
Variables
Variables no controlables
Variables controlables
Factores que alteran los resultados

10 – 2311
12
14 – 17
18 – 19

3
3.1
3.2
3.3
3.4
3.5
3.6

Extracción de sangre venosa
Preparación del paciente
Responsabilidades de la persona que realiza la extracción
Identiﬁcación
Campos de aplicación
Orden de extracción
Cómo evitar el llenado insuﬁciente

20 – 27
21
21
22 – 24
25
26
27

4
4.1
4.2
4.3
4.4
4.5
4.5.1
4.5.2
4.5.3
4.6
4.7
4.7.1
4.7.2
4.7.3

Procedimiento de extracción de sangre venosa
Condiciones estándar para la extracción de sangre
Obtención de la muestra para análisis: 12 pasos
Torniquete venoso y puntos de punción
Problemas antes y durante la extracción de sangre
Técnicas de aspiración y vacío
Técnica de aspiración con S-Monovette®
Técnica de vacío con S-Monovette®
Resumen de las dos técnicas de extracción
Extracción de sangre en catéteres
Extracción de sangre para diagnóstico mediante hemocultivo
Requisitos higiénicos
Procedimiento de extracción de sangre
Volumen de la muestra y número de tubos

28 – 4329
29
30 – 3132
33
33 – 35
36
37
38 – 39
40
41
42
43

5
5.1
5.2
5.3
5.3.1
5.3.2
5.4
5.5
5.6

La extracción de sangre en pediatría
Datos del paciente (Anamnesis)
Condiciones para la extracción de sangre
Extracción de sangre en pediatría
Extracción de sangre venosa
Extracción de sangre capilar
Diferencia entre la sangre capilar y la sangre venosa
Intervalos normales
Hemostasia en pediatría

44 – 5545
46
46
47 – 48
49 – 5151
52 – 54
54 – 55

4

Página 6 – 9
7
8
9

6
6.1
6.2
6.3
6.4

Gas en sangre
Tipo de extracción de sangre
Almacenamiento
Prevención de erroresTécnica de extracción: Monovette® para gas en sangre

56 – 61
57
58
58 – 59
60 – 61

7
7.1
7.2
7.3

Seguridad en la extracción de sangre
Aguja de seguridad
Aguja de seguridad Multiﬂy®
Recipientes para eliminación Multi-Safe

62 – 6764
65
66 – 67

8
8.1
8.2
8.3
8.4
8.5

Centrifugación
Manipulación correcta en centrifugación
Diferencia entre rotor de ángulo ﬁjo y rotor basculanteObtención de suero
Condiciones de centrifugación para S-Monovette®
Ascensión del gel durante la centrifugación

68 – 73
69
70
71
72
73

9
9.1
9.2
9.3
9.4

¿Qué es la hemólisis?
Hemólisis in vivo
Hemólisis in vitro
Consecuencias de la hemólisis
Importancia clínica

74 – 79
76
77
78
79

10
10.1
10.2

Almacenamiento y transporte
Transporte de las muestras
Inﬂuencia de la temperatura, el tiempo y el metabolismo celular

80 – 87
81 – 82
83 – 87

11
11.1
11.1.111.1.2
11.2
11.3

Extracción de sangre capilar
Procedimiento de extracción de sangre capilar
Lanceta de seguridad y lanceta de incisión de seguridad
Orden de llenado y técnicas de extracción con Microvette®
Condiciones de centrifugación en extracción de sangre capilar
Minivette® POCT

88 – 99
89 – 91
92 – 94
95 – 97
98
99

12
12.1
12.2
12.3
12.4
12.5

Obtención de muestras de orina
Obtención de las muestras
Almacenamiento y transporte
Tipos de análisis
Tipos de muestras de orina
Manipulación de sistemas de extracción de muestras de orina

100 – 111
101
101
102 – 104
104 –105
108 – 111

13

Bibliografía

112 – 11314Índice114 – 120

15

Aviso legal

121

5

1 ¿En qué consiste lafase preanalítica?

1.1

Fundamentos de preanalítica

La fase preanalítica constituye el 57%1 de todo el proceso que se desarrolla entre
el paciente y el resultado del análisis. La preanalítica comprende, entre otros, laindicación, la información e identiﬁcación del paciente, la extracción de las muestras
y su transporte posterior, y el almacenamiento de las mismas hasta la centrifugacióny la distribución en el laboratorio.
En deﬁnitiva, abarca distintos ámbitos y pasos de trabajo.
1

Guder et al; Proben zwischen Patient und Labor; 2009

Las posibilidades de inﬂuir y modiﬁcar los resultados analíticos a través de los pasos
individuales en este proceso son, por tanto, elevadas.
¡Tenga en cuenta que alrededor del 25% de los errores en preanalítica
tienen supuestamente consecuencias para lospacientes!
Aún más importante es que todas las partes implicadas estén informadas de lasposibles inﬂuencias y errores, a ﬁn de poder reaccionar correctamente teniéndolos
en cuenta para evitarlos. Porque los resultados de medida solo pueden ser tan
buenos como lo permita la calidad de la muestra.

“La fase preanalítica comprende todos los procesos
que se desarrollan antes del análisis en el laboratorio”

6

7

1.2

Consecuencias frecuentes de los errores en preanalítica

¿Se pueden modiﬁcar las magnitudes durante la extracción de sangre?

Errores frecuentes

1.3

El éxito de la comunicación

La comunicación entre las personas implicadas simpliﬁca los procesos, evita losmalentendidos e impide que se produzcan errores en la fase preanalítica por falta deinformación o información incorrecta.

Paciente
Hemólisis

Llenado insuﬁciente

Coagulación de la sangre

Médicodel paciente

44 %2
2

17 %2

Especialistade laboratorioclínico

8 %2

Modiﬁcado según: Bonini et al; Errors in Laboratory Medicine; Clin Chem 48:5; 691-698 (2002)¡Tenga en cuenta que los problemas en el ámbito de la preanalítica nose pueden resolver nunca por sí solos, sino a travésde una estrecha colaboración entre las personas
implicadas, como los médicos, el personal sanitario yde enfermería, y el laboratorio.

Tenga en cuenta que

3

el 70-85% de las decisiones clínicas se basan en losresultados de análisis de laboratorio3

Foubister, Vida. Cap Today Bench press: The Technologist/technician shortfall is putting the squeeze on laboratories nationwide,
Septiembre 2000; Datta, P. Resolving Discordant Samples. Advance for the Administrators of Laboratories; Julio 2005: p.60.

Objetivo
Lograr unas condiciones estandarizadas para …
s la preparación para la extracción de sangres el procedimiento de extracción de sangres el almacenamiento y transporte al laboratorio

Resultados Seguridad para los pacientess Reducción de los costos del proceso (horas de trabajo)

892 Variables y factores
que alteran losresultados

2.1

Variables

Responsabilidades del pacientes Proporcionar datos correctos en la anamnesiss Medicación (comunicarla, interrumpirla dado el caso)s Alimentación (dieta, acudir en ayunas)s Recoger correctamente la muestra (orina, heces, etc.)

Es importante para que los datos de la anamnesis sean correctos que antes de la
extracción de la sangre se formulen las preguntas correctas.
Para ello es importante tener en cuenta las posibles variables, ya que:Las variables modiﬁcan la concentración de los analitos.
A la hora de evaluar los resultados, es necesario tener en cuenta las
inﬂuencias sobre la concentración, con independencia de la enfermedad delpaciente.

Las variables y los factores que alteran los resultados que se mencionan en lossiguientes apartados no pretende ser una enumeración exhaustiva. Para ilustrar
mejor cada temática se muestran algunos ejemplos.

“Entre la extracción de sangre y el análisis,
el material a analizar se expone a una serie devariables y factores de inﬂuencia que pueden
falsear los resultados analíticos”

1011

2.1.1 Variables no controlables
La población

Edad

Existen diferencias signiﬁcativas entre la población africana y la europea.
En la primera:- la cantidad de leucocitos es signiﬁcativamente menor- la concentración de la vitamina B12 es 1,35 veces más alta
- las concentraciones de creatinina, CK y _-amilasas son más elevadas
En los asiáticos, en comparación con los europeos, la actividad de la alcohol
deshidrogenasa es inferior. Además, la población asiática muestra una mayor
intolerancia a la lactosa.

Con frecuencia, a medida que envejecemos aumenta el nivel de colesterol, tanto en
hombres como en mujeres (aunque depende principalmente de la nutrición).
El metabolismo de los huesos inﬂuye sobre la fosfatasa alcalina, por lo que lasconcentraciones más altas se dan en los niños en edad de crecimiento y despuésde fracturas óseas.
En los lactantes, los niveles de bilirrubina, hematocrito y hemoglobina son elevados(más ejemplos en el apartado 5: Extracción de sangre en pediatría).

Sexo

300

Aparte de los componentes ligados al sexo (las hormonas), la masa muscular,
por ejemplo, es uno de los factores que inﬂuye sobre las magnitudes clínicas.
- la CK y la creatinina dependen de la masa muscular y por ello suelen ser más
elevadas en los hombres

250

mg/dl

Embarazo
La velocidad de sedimentación eritrocitaria aumenta a lo largo del embarazo
hasta 5 veces.1

150

LDL

100
50

5
1

Colesterol

200

Guder et al.; Proben zwischen Patient und Labor; 2009

HDL

0

Sarstedt; Tipps & Tricks in der Präanalytik; 2014

15

25

35

45

55

65

Años
5

+100 %

Desviaciones en %

-20
4

0

20

40

60

80

Triglicéridos
Leucocitos
CHOL
AP
HierroProteína total

Sarstedt; 5 Consejos y Técnicas en Preanalítica; 2014

Ritmo biológico
La producción de vitamina D muestra oscilaciones estacionales (25(OH)D).
En verano, debido al aumento de radiación UV, se sintetiza más vitamina D
que en invierno.

100

Seelig et al; Präanalytik; 2008

1213

Ritmo circadiano

Estimulantes: Alcohol

También denominado oscilación rítmica diaria, designa las diferencias deconcentración esperadas dentro de un mismo día para determinados parámetros(p. ej. renina, cortisol, adrenalina, noradrenalina, AVM y TSH).
Por lo tanto, para dichos parámetros, la hora de la extracción es sumamente
importante. Además, las mediciones de control se deben realizar siempre tomando
las muestras a la misma hora del día. Como regla general, la hora de la extracción
se debe documentar y comunicar al laboratorio.
Asimismo, las muestras compuestas de 24 horas (por ejemplo, de orina o saliva)
pueden ayudar la obtener resultados comparables. En particular, el cortisol, comoindicador del estrés, es un ejemplo bien conocido. La concentración máxima decortisol se alcanza por las mañanas.

μg/dl

30
25
20
15
10
5
0

Cortisol

0
5

6

12

18

24

¡Tenga en cuenta que
el ritmo circadiano (el reloj
biológico) puede desplazarse
por viajes a otras zonas horariaso porque el paciente trabaje por
turnos.
Cuando se analizan parámetros
que dependen de los ritmos deldía, estos aspectos se deben
preguntar al paciente durante laanamnesis.

En los casos de consumo crónico de alcohol, las actividades de las enzimas
hepáticas Ƣ-GT, ALT (GPT) y AST (GOT) aumentan, y las concentraciones de ácido
fólico y vitamina B6 disminuyen.

Desviaciones en %

-50
4

0

50

150

250

350

450

Seelig et al; Präanalytik; 2008

Estimulantes: Nicotina
El consumo crónico de nicotina aumenta el número de leucocitos, de marcadores
tumorales como CEA (en hombres) y de la AP placentaria (PLAP)

Sarstedt; 5 Consejos y Técnicas en Preanalítica; 2014

Desviaciones en %2.1.2 Variables controlables
Consumo de drogas
El consumo regular de drogas, como cannabis, heroína o morﬁnas altera losparámetros como sigue:
El consumo de cannabis aumenta los valores de cloruro, urea, insulina, potasio ysodio. Por el contrario, la glucosa, el ácido úrico y la creatinina disminuyen.
En los casos de consumo de heroína, el colesterol, el potasio y la tiroxina aumentan.
El consumo de morﬁnas provoca un aumento de GPT, amilasa, AP, bilirrubina,
lipasa, prolactina y TSH. Por su parte, durante el consumo de morﬁna, la insulina yla noradrenalina disminuyen.

14

a-GT
AST
Noradrenalina
Adrenalina
Cortisol
Triglicéridos
Colesterol
AVM
LDL+1000 %

-60
3

-40

-20

0

20

40

60

80

ECA
Prolactina`-carotínicos
Fosfato de piridoxal
SelenioHDL
LDL
Colesterol
Hematocrito
VCM
Fibrinógeno
Cobre
CHCM
CadmioMonocitos
Linfocitos
Granulocitos
ACE

Seelig et al; Präanalytik; 2008

15

Estimulantes: CafeínaInﬂuencia de la posición del cuerpo

Tan solo 200 mg de cafeína (2 tazas de café variedad robusta o 2 a 4 tazas devariedad arábiga) aumentan la concentración de adrenalina, noradrenalina y cortisol(cortisol + 40%)

La distribución del agua corporal es diferente según sea la posición del cuerpo.
Esto hace que ciertos parámetros, como las células sanguíneas, las proteínas y lassustancias unidas a proteínas estén más concentradas en los pacientes en posición
sentada que en los pacientes tumbados.

Administración de medicamentos
La penicilina y el ibuprofeno elevan los niveles de potasio. La administración depenicilina también prolonga el tiempo de tromboplastina (Quick).
La ingestión de ácido acetilsalicílico (AAS) aumenta los valores de GOT/AST, GPT/
ALT, creatinina y ácido úrico, dependiendo de la dosis.
El medicamento fenobarbital, que se utiliza para el tratamiento de la epilepsia y en la
preparación para la anestesia, es un inductor enzimático. Los valores de AP y y-GT
aumentan, mientras que la bilirrubina disminuye.
Además, los diuréticos alteran el equilibrio electrolítico. En este caso el efecto se
maniﬁesta en relación con la clase de sustancia, por ejemplo, potasio, calcio o magnesio.
La administración de pantozol (inhibidor de la bomba de protones) reduce losvalores de calcio.
Los laxantes pueden provocar una reducción del potasio.

Colesterol HDL
Hematocrito
Eritrocitos
Aldosterona
Epinefrina
Renina0
5

2

5

Sarstedt; Consejos y Técnicas en Preanalítica; 2014

3

4

16

30

40

50

60

Sarstedt; Consejos y Técnicas en Preanalítica; 2014

AnalitoAlbúmina, proteína total

Creatina quinasa
Piruvato quinasa
GOT/AST
Urea
Ácido úrico
Fosfato inorg.
GlucosaAlbúmina
CalcioFosfat. alc.
Sodio
Potasio

Cambio en %Ayuno

Hora de comida estándar

- 10

+5

Bilirrubina+ 15

Calcio+5a-glutamiltransferasa (a-GT)- 50

Glucosa
GOT/AST+ 15+ 30

GPT/ALT5

Por actividad física, en este caso, nos referimos a una sobrecarga física importante.
Para las personas sanas esto puede ser por ejemplo, correr un maratón. Para un
paciente postrado en cama, caminar hasta la consulta ya puede constituir una
sobrecarga física importante.

20

Cambios dependientes de la alimentación

La actividad física en comparación con el estado normal puede provocar el aumento
de distintos parámetros.

110

La tabla muestra los cambios en las concentraciones de los analitos en el caso deayuno de 4 semanas o tras una comida estándar de 800 kcal.

Actividad física

Incremento-x veces de los valores

Incremento en %+ 10Ácido úrico

+ 20

+5

Urea

- 20

+5

PotasioCreatinina

+ 10
+ 20

FósforoTriglicéridos
4

+ 20

+ 15
- 40

Seelig et al; Präanalytik; 2008

17

2.2

Factores que alteran los resultados

Los factores que alteran los resultados pueden modiﬁcar los resultados medidos einterferir dependiendo del método.
Por consiguiente, modiﬁcando los métodos se pueden eliminar dichos factores.

Se puede diferenciar entre factores de inﬂuencia propios del organismo (endógenos)
y ajenos al organismo (exógenos). A continuación se describen algunos ejemplos defactores que alteran los resultados:

Factores propios del organismo (endógenos)
CausasConsecuencias-

Síndrome de Gilbert
Síndrome de Crigler-Najjar
Hepatitis aguda
Insuﬁciencia hepática aguda→ Hiperbilirrubinemia = ictericia→ Posible interferencia, p.ej. En colesterol,-

Esferocitosis
Hemólisis inmune
Anticuerpos hemolíticos
Hemoglobinopatías→ Hemólisis→ Falsiﬁcación de un gran número decreatinina, ác. úrico

mediciones ópticas→ Mediciones más altas debido a laliberación de eritrocitos(p. ej. potasio, LDH, AST)

- Hiperlipoproteinemia- Alteración del metabolismo lipídico

→ Lipemia→ Falseamiento signiﬁcativo de los valores
de coagulación por interferencias ópticas→ Distorsión signiﬁcativa de un gran
A

Image

CaliﬁcaciónBC

número de mediciones ópticas.
Falsos niveles bajos en análisis deelectrolitos (Sodio, potasio) debido alefecto de dilución)

D

Posible causa
6

A

Lipemia

Debido a enfermedad o paciente no en ayunas

B

Ictericia

Síndrome o debido a enfermedad

C

Hemólisis

Errores de preanalítica o debido a enfermedad

D

NormalCondiciones preanalíticas adecuadas y correctas- Hematocrito > 65%→ Elevación de TTP y TTPa6- Hematocrito < 20%→ Reducción de TTP y TTPa6

G. Endler et al; The importance of preanalytics for the coagulation laboratory; Hämostaseologie 2/2010; 30: 63-70

Factores ajenos al organismo (exógenos)
Causas- Medicamentos (solución para infusión,
antibióticos, hemoderivados)- Anticoagulantes (contaminación por
arrastre de preparaciones)- Contaminaciones (bacterias, hongos,
biocapa bacteriana de catéter venoso
central para cultivo sanguíneo)- Montar en bicicleta o a caballo

18

Consecuencias→ Resultados de medida erróneos
(pueden aumentar o disminuir)→ puede aumentar el valor de PSA

19

3 Extracción desangre venosa

3.1

Preparación del paciente

Informar al paciente
s Informar al paciente de manera comprensible sobre las medidas diagnósticas
que se van a tomar y de su objetivo ayuda a reducir el estrés y la ansiedad.

Completar esta información con la aclaración de determinadas normas
que debe cumplir el paciente, p. ej., en cuanto as Toma de medicamentos
s Observación de determinadas dietass Acudir en ayunas a la prueba (excepto en diagnósticos de urgencia)
Los niños, especialmente, necesitan una preparación cuidadosa, si bien la
información se debe adaptar a su capacidad de comprensión.

3.2

Responsabilidades de la persona que realiza
la extraccións Organización de la extracción de las muestrass Documentación correcta (identiﬁcación del paciente y de la hora del día)s Dar instrucciones y preparar al paciente para la extracción de la muestras Preparación de la muestra (en su caso, centrifugación)s Almacenamiento hasta la recogida (en su caso, enfriar/calentar)“La sangre venosa es el material de análisis
más importante para dar respuesta a losinterrogantes médicos.
Por consiguiente, utilizar una técnica correcta
de extracción de sangre es de suma importancia”.

20

Atención:
La comunicación con el laboratorio y con el servicio de transporte es
indispensable para un buen transporte y almacenamiento.
Para más información, consultar el apartado 10: Transporte y almacenamiento.

21

3.3

Identiﬁcación

Identiﬁcación del paciente
s Apellidoss Nombres Fecha de nacimientos Dado el caso: Número de ingreso, área, número de habitación

Las confusiones no se dan solamente con los apellidos comunes.
Importante:
Nunca:

Formular siempre preguntas directas.
“¿Es usted el Sr. García, verdad?

De lo contrario, un paciente que no oye bien, es sordo o tiene una edad avanzada,
puede asentir alegremente con la cabeza.
El paciente sentado en la cama, también puede ser simplemente una visita.

En el caso de que la identidad del paciente no esté clara, no se deben
extraer muestras o solamente con reservas.

Identiﬁcación de la muestras Los recipientes de muestras que no posean una identiﬁcación
clara no se deben analizar nunca.
s Las etiquetas de código de barras contribuyen a laidentiﬁcación segura.
s La identiﬁcación siempre se debe llevar a cabo en el
recipiente primario.
s Para recipientes de vidrio o plástico utilizar solamente
rotuladores indelebles.
s Los aditivos (inhibidor de la coagulación, activador de lacoagulación, gel) se identiﬁcan con el código de colordel recipiente de la muestra. Puesto que no existe una
estandarización internacional, puede ser necesaria alguna
identiﬁcación adicional.

No identiﬁcar nunca la muestra en el tapón,
el embalaje externo o el contenedor de envío.

Identiﬁcación de la persona que realiza la extracción de sangre
La identidad de la persona que ha realizado la extracción debe poder determinarse
para cada muestra.
s Dado el caso, anotar su identiﬁcación en el volante
Los datos relativos al tipo y hora de la extracción, así como los posibles problemas
durante la toma de la muestra, el estado del paciente y otros detalles importantes
pueden ser de utilidad si los resultados analíticos fueran poco claros.

Identiﬁcación del médico solicitante
La identidad del médico que solicita la prueba permite realizar consultas en casos des peticiones ilegibles (p. ej. en el volante)s peticiones erróneas (p. ej. fosfatasa prostática en una paciente de sexo femenino)s restricción a los parámetros más importantes cuando existe poca cantidad demuestra22

23

Requisitos legales y etiquetado

3.4

s El material remitido para análisis así como todas sus partes se deben poderasignar inequívocamente al paciente. Si esto no fuera posible, el laboratorio
médico puede no procesar el material.
7

Aplicación
Preparación

Aplicación

Suero

Bioquímica clínica, serología, análisis especiales

Suero-Gel

Bioquímica clínica, serología,(solo para diagnóstico de rutina)

Heparina-Litio

Obtención de plasma para bioquímica clínica,
serología

EDTA K

Hematología(p. ej. Hb, HWC, eritrocitos, leucocitos)

Citrato 1:10

Análisis de coagulación(p. ej. Quick, PTT, TT, ﬁbrinógeno)

Citrato 1:5

Determinación de VSG con el método Westergren outilizando la S-Sedivette®

Fluoruro

Determinación de glucosa (estable 24 h)
así como enzimas. Lactato

GlucoEXACT

Determinación de glucosa(estable 48 h, en TR)

RiLiBÄK; § 6.1.7. Parte A

La solución consiste en poner el código de barras al recipiente de lamuestra antes de la extracción de la sangre.

Línea delcódigo debarras

®

®

®

Name

Name

Name

Name

Nam
e

s Los recipientes de las muestras estáncorrectamente etiquetados cuando:
 permiten visualizar el contenido sin restriccioness se puede controlar el estado de llenado
 el cierre de rosca se puede retirar libremente el tubo y la etiqueta no se deben poder quedar
atascados o pegados a la centrífuga

24

✗ ✗

✗ ✗ ✓

25

3.5

Orden de llenado

3.6

Se ha discutido repetidas veces el orden de llenado correcto de los tubos durante la
extracción. Los conocimientos y los estudios actuales demuestran que cuando se
utiliza un sistema moderno de extracción de sangre y si la manipulación del sistemade extracción de sangre cerrado es correcta, el arrastre de los aditivos es muy
improbable. Por ejemplo no se ha apreciado arrastre de EDTA cuando se realiza la
extracción con la aguja de seguridad o con la S-Monovette®8.
En el caso de arrastre de EDTA a un tubo de suero o heparina, podrían aumentar
los valores de potasio y disminuir los de calcio.9
No obstante, a ﬁn de garantizar la mayor seguridad posible en la extracción desangre, recomendamos seguir el orden siguiente de llenado.
89

RA Sulaiman, Effect of order of draw samples during phlebotomy on routine biochemistry results; J Clin Pathol. 2011 Nov;64(11):1019-20
RR Calam et al; Recomendable “Order of Draw” for Collecting Blood Specimens into Additve-Containing Tubes; Clin. Chem.;
Vol. 28, No. 6, 1982

Cómo evitar el llenado insuﬁciente

Para evitar los errores o desviaciones de medida en el laboratorio debidas a un
llenado insuﬁciente, es necesario alcanzar el volumen de llenado exacto. Esto sedebe tener en cuenta, en general, para todas las preparaciones.
Además, es especialmente necesario llenar exactamente los tubos de citrato paralos análisis de la coagulación.
El llenado insuﬁciente redunda en un exceso de citrato en el tubo (relación entre lasangre y la preparación). Dado que el citrato se une al calcio, habrá una cantidad
de citrato unida mayor de la esperada. Esto tiene consecuencias directas sobre losresultados de laboratorio.
Cuando en la extracción de sangre con una aguja de seguridad Multiﬂy® se extrae
en primer lugar el citrato, se produce un llenado insuﬁciente debido al volumen
muerto del tubo ﬂexible.
Tenga en cuenta que

cuanto más largo sea el tubo ﬂexible empleado,
mayor será la falta de volumen

Orden de llenado recomendado

10
11

Según Gurr10:

Según CLSI11:

Cultivo de sangre

Cultivo de sangre

Sangre para Suero /Suero-Gel

Sangre para Citrato

Sangre para Citrato

Sangre para Suero /Suero-Gel

Sangre para Heparina /Heparina-Gel

Sangre para Heparina /Heparina-Gel

Sangre para EDTA

Sangre para EDTA

Sangre para Fluoruro /Citrato-Fluoruro

Sangre para Fluoruro /Citrato-Fluoruro

Volumen muerto = volumen en el tubo ﬂexible:
Tubo de 30 cm: > 450 μl
Tubo de 20 cm: > 300 μl¡Llenado
Tubo de 8 cm: > 120 μl
insuﬁciente!

Por tanto, para el llenado/purga de aire en el tubo ﬂexible se debe tomar un primer
tubo y después desecharlo (tubo vacío/para desechar). Solo después se debe llenar
el tubo de citrato.

Gurr et al “Musterstandardarbeitsanweisung Präanalytik” J Lab Med 2011
CLSI Procedures for the Collection of Diagnostic Blood Specimens by Venipuncture, Approved Standard,
6th edition GP 41-A6 (former H3-A6), 27 (26) 200726

27

4 Procedimiento
de extracciónde sangre
venosa4.1

s El paciente no ha realizado actividades físicas inusuales o extremas hasta 3 díasantes de la extracción de sangres No ha abusado del alcohol el día anterior (abstinencia de alcohol de 24 horas)s Está en ayunas entre las 7 y las 9 (es decir, no ha ingerido alimentos desde hace
12 a 14 horas, puede beber agua)s En reposo (sentado o tumbado) al menos 10 minutos antes de la extracción desangres ¡Evitar “bombear”! Abrir y cerrar el puño da lugar a un aumento considerable depotasio (hasta de 2 mmol/l)s Colocar el torniquete como máximo durante 1 min (preferiblemente 30 segundos)s Realizar la punción, soltar el torniquete y extraer la sangres Medicamentos: tomar o interrumpir de acuerdo con las instrucciones del médico

4.2“Técnica de extracción de sangre venosa paso a paso:
el procedimiento correcto en la práctica clínica”

28

Condiciones estándar para la extracción de sangre

Obtención de la muestra para análisis: 12 pasos

1. Desinfectar las manos. Utilizar guantes
2. Colocar el torniquete venoso
3. Examinar las venas y escoger una de ellas
4. Desinfectar
5. No volver a tocar el punto de punción
6. Retirar el protector de la aguja de seguridad
7. Mantener el bisel de la aguja mirando hacia arriba
8. El ángulo de punción debe ser menor de 30°
9. Tensar la piel para ﬁjar la posición de la vena
10. Dado el caso, “advertir” al paciente
11. Aﬂojar el torniquete cuando la sangre empiece a ﬂuir
12. Extraer la sangre teniendo en cuenta el orden de llenado

29

4.3

Torniquete venoso y puntos de punción
Desinfectar según el plan dehigiene vigente

Tiempo de constricción
Los torniquetes mantenidos más de 1 minuto pueden provocar desviaciones deconcentración en los resultados de medida.

Comparación: torniquetes de 2 min a 5 min
Colocar el torniquete venoso a
una distancia de un palmo por
encima del punto de la punción
El pulso debe ser perceptible(presión del torniquete
50-100 mm Hg)
Tiempo máximo deconstricción: 1 minuto

Desviación médica de t0 en %Un palmo por encimadel punto de punción

15

5

2

3

4

6

A

10

Bilirubin
Bilirrubina
Colesterol
Cholesterin
Hierro, ALT
ALTEisen,
Proteina,GGT
GGT
Protein,Albumin,Albúmina,CK
CK
AST,
TG
AST, TG

5

Calcium
CalcioCreatinina
Kreatinin0Natrium
Sodio

1
GlucoseGlucosa
KaliumPotasio-5

Puntos de punción➊ Vena basílica
➋ Vena mediana cubital (se trata de la vena más profunda y gruesa,
no de color azul, que solo se aprecia como un abombamiento)➌ Vena cefálica, trayectoria del lado del pulgar➍ Vena cefálica
➎ Vena basílica
➏ Red venosa dorsal de la mano

30

2

4

6

Tiempo de constricción

12

Lichtinghagen et al.: Einﬂuss der Stauzeit auf normalisierte Laborwerte; J Lab Med 2013; 37(3): 131–137

31

4.4

Problemas antes y durante la extracción de sangre

Venas difíciless Buscar otro punto para la puncións Colocar una compresa o un paño calientes Utilizar la aguja de seguridad Multiﬂy®
s Realizar la extracción de sangre con el método de aspiración

4.5

Técnica de aspiración y vacío

4.5.1 Técnica de aspiración con S-Monovette®

Interrupción del ﬂujo de sangre durante la extracción
El oriﬁcio de la aguja está tocando lapared de la vena
Solución:
Tirar suavemente de la aguja hacia atrás
hasta que retorne el ﬂujo de sangre.
La agua ha traspasado la vena
La solución consiste en
Tirar suavemente de la aguja hacia atrás
hasta que retorne el ﬂujo de sangre.

La vena se ha colapsado
Solución:
Espere a que la vena recupere su forma y
después aspire con cuidado.

s El “bombeo” con el puño provoca, debido a la actividad muscular, un aumento de
K+ y Mg2+
s Prolongar excesivamente la constricción altera algunos parámetros, por ejemplo,
el K+, y la a-GT
s No es necesario “doblar” la aguja de seguridad en el caso de la S-Monovette®,
dado que su ángulo de punción es muy plano. La alteración del lumen de la aguja
por doblado puede dañar las células (hemólisis).
s Las agujas demasiado ﬁnas también pueden causar hemólisis.

32

IMPORTANTE:s Inmediatamente antes de la punción, conectar la aguja de seguridad de la
S-Monovette® con un ligero giro en el sentido horario.

✓s Con el dedo pulgar de la mano libre tensar la piel y mantener la vena en
su posición. “Advertir” al paciente y realizar la punción. Tan pronto se hayapuncionado correctamente la vena, aparece una primera gota de sangre en la
S-Monovette®. Así verá el extractor si ha puncionado la vena.

s Aﬂojar el torniquete del todo y tirar suavemente del émbolo hasta el tope.
Esperar hasta que la sangre deje de ﬂuir.

33

CRAC

✓




➁

CLIC

➀

s Cambio de la S-Monovette cuando se realizan extracciones múltiples.
Desconectar la S-Monovette® de la aguja de seguridad con un ligero giro
en el sentido antihorario. La aguja de seguridad permanece en la vena.
®

IMPORTANTE:En primer lugar, tirarrecto del émbolo
hacia atrás hasta
que el émbolo
encaje con un CLIC
audible.

Desplazar el émbolocompletamenteÖhacia atrás

Solo entonces,romper elémbolo CRAC

Ö

Finalización de la extracción de sangre

En todos los modelos de S-Monovette®, una vez
completada la extracción, tirar del émbolo hasta quehaga “clic” y romperlo (“crac”).

s En primer lugar desconectar la S-Monovette® y después extraer la aguja
de seguridad de la vena.

CRAC!
CLIC!

34

35

4.5.2 Técnica de vacío con S-Monovette®

4.5.3 Resumen de las dos técnicas de extracción

Técnica de aspiración

Técnica de vacío

CRAC

✓ ➀

➁

CLIC

s Antes de la extracción debe estar la aguja de seguridad ya colocada en la vena.
s Recomendamos, en principio, llenar la primera S-Monovette® con la técnica deaspiración, a ﬁn de comenzar la extracción de sangre de forma suave. Después
se puede seguir extrayendo con la técnica de vacío.
s Inmediatamente antes de la extracción, tirar del émbolo hacia atrás y ﬁjarlo en el
fondo de la S-Monovette® (clic). A continuación romper el émbolo (crac).
s Conectar la S-Monovette® con vacío en la aguja de seguridad girando en elsentido horario.

s Esperar hasta que el ﬂujo de sangre se detenga, a continuación desconectarla S-Monovette® de la aguja de seguridad y solo después extraer la aguja deseguridad de la vena.

36

37

4.6

Factor de riesgo de hemólisis: Catéter

Extracción de sangre en catéteres

En la extracción de sangre de catéteres no se recomienda utilizar la técnica de vacío
debido a las elevadas velocidades de ﬂujo de la sangre, lo que redunda en un alto
riesgo de hemólisis.14-17

La extracción de sangre en
catéteres se debe evitar por
el posible falseamiento de losvalores medidos. La hemólisis
y las contaminaciones por
infusiones son riesgos probables.
No obstante, si la extracciónde sangre del catéter es
imprescindible, se debe tener encuenta lo siguiente:

Con la técnica de aspiración se puede conseguir un llenado lento y cuidadoso18
de la S-Monovette®. De esta forma, el riesgo de hemólisis se reduce
considerablemente.
14

16

s Entre la última infusión y la extracción de sangre deben transcurrir al menos 15
minutos, a ﬁn de evitar efectos de dilución o contaminaciones. El tiempo dependede la infusión y debe establecerse conforme a las normas internas del centro.6
Infusión

Margo A et al.; Obtaining blood samples from peripheral intravenous catheters: best practice; AJCC, 9.2009, 18 (5)Lippi et al.; Prevention of hemolysis in blood samples collected from intravenous catheters; Clin Biochem 46: 561–564, 2013
Heyer et al.; Effectiveness of practices to reduce blood sample hemolysis in EDs: A laboratory medicine best practices systematic review
and meta-analysis Clin Biochem 45: 1012-1032, 201217
Grant MS; The Effect of Blood Drawing Techniques and Equipment on the Hemolysis of ED Laboratory Blood Samples; J Emerg Nurs
29:116-121, 200318
Benso S; Can a blood sample for diagnostic exams be drawn from a peripheral venous catheter?; Assist Inferm Ric; 34(2):86-92;
Apr-Jun 2015
15

Tiempo mínimo (horas) que debe transcurrir
para la extracción de sangre después deﬁnalizar la infusión

Emulsión grasa

8

Solución rica en hidratos de carbono

1

Aminoácidos, hidrolizados de proteínas

1Electrolitos

1

Multiadaptador: la conexión directa
La S-Monovette® se puede conectar directamente al catéter con ayuda delmultiadaptador.
Se puede evitar el uso de jeringas de un solo uso, evitando así el riesgo asociado dehemólisis y de contaminación cruzada.

s Recomendaciones sobre tiempo que debe transcurrir para la extracción desangre después de infusiones.1
s Si el catéter se ha lavado con una solución con heparina, se debe lavar
con cloruro de sodio antes de la extracción de sangre para el análisis de lacoagulación.13
s Antes de la extracción de sangre se deben desechar 5-10 ml de sangre. A ﬁn deevitar confusiones, se debe identiﬁcar dicho tubo de forma correspondiente.13
De modo general, comunicar al laboratorio que la muestra se ha tomado deun catéter, simpliﬁcará las posibles diﬁcultades de interpretación de resultados
inverosímiles. Para el control de terapias medicamentosas, se debe prestar especial
atención al riesgo de contaminación. El arrastre de restos de medicamentos puede
generar valores elevados incorrectos.
1

Guder et al; Proben zwischen Patient und Labor; 2009
G. Ender et al; The importance of preanalytics for the coagulation laboratory; Hämostaseologie 2/201013
M. Spannagl et al; Hämostaseologische Globaltests; Hämostaseologi 1/2006
638

s Para conectar la S-Monovette® con conexiones Luer, como un catéter in vitro oválvulas de tres vías.

39

4.7

Extracción de sangre para diagnóstico mediante
Hemocultivo

La sepsis se conoce también en el lenguaje común como un envenenamiento dela sangre. Lo que es menos conocido, es que su mortalidad es de alrededor del
50%19.

Síntomas frecuentes:
s Apatía o debilidads Fiebre, escalofríoss Confusións Diﬁcultad para respirar e hiperventilacións Pulso acelerado, hipotensións Manos y pies fríos con mala perfusión (centralización)
La sepsis es una emergencia médica que requiere un diagnóstico lo más tempranoposible y exige un tratamiento inmediato: los estándares de tratamiento nacionales
e internacionales requieren la administración de antibióticos en un plazo de una
hora. Antes de la administración del antibiótico deben realizarse al menos dos
hemocultivos.
El momento recomendado para la extracción de sangre es al comienzo de unacceso de ﬁebre, en una vena periférica.
La extracción de sangre a través dispositivos de acceso venoso, como un catéter
venoso central, no es adecuada.
El valor del resultado dependerá en gran medida de la supresión de lacontaminación, el tiempo de transporte, las condiciones de almacenamiento y lacomunicación de la información clínica del paciente.21

4.7.1 Requisitos higiénicos
Los hemocultivos falsos positivos, por lo general, se deben a unas medidasde higiene insuﬁcientes y provocan en algunos casos hospitalizaciones más
prolongadas, tratamientos antimicrobianos innecesarios, diagnósticos adicionales yconsiderables costos añadidos.21
La extracción de sangre con recipientes para hemocultivo debe realizarse teniendoen cuenta los requisitos higiénicos.

Para evitar las contaminaciones es necesario seguir los pasos siguientes:
1. Desinfección higiénica de las manos
2. Llevar guantes
3. Desinfección del punto de punción(p. ej. con isopropanol al 70% o un desinfectante tópico)a. Aplicar el desinfectante y distribuir con una gasa
b. Aplicar el desinfectante y esperar 60 segundos a que se seque

Importante: Después de la desinfección de la piel no volver a palpar el puntode punción.
4. Desinfección de los recipientes para cultivo de sangre
a. Retirar el tapón protectorb. Desinfectar el cierre de gomaSe debe comunicar al laboratorio la siguiente información: 20
s Lugar de la extraccións Fecha de extraccións Identiﬁcación del pacientes Diagnóstico preliminars Dado el caso, datos sobre tratamiento antibiótico
19
20
21

Pschyrembel; 2004
J. P. Borde et al; Abnahme von Blutkulturen; Dtsch Med Wochenschr; 135:355-358; 2010
Simon et al; Blutkulturdiagnostik – Standards und aktuelle Entwicklungen; J Lab Med; 36(4):199–207; 2012

40

21

Simon et al; Blutkulturdiagnostik – Standards und aktuelle Entwicklungen; J Lab Med; 36(4):199–207; 201241

4.7.2 Procedimiento de extracción de sangre
4. A continuación puede llevar a cabola extracción de la sangre siguiendo elprocedimiento acostumbrado con la aguja
Multiﬂy® de seguridad.

1. Lleve a cabo los pasos de higiene arriba
citados.
Conecte el adaptador universal parahemocultivo mediante el Multiadaptor
a la aguja Multiﬂy® de seguridad.
Realice la punción de la vena y ﬁje la aguja.

21G

21G

2

1
2

2

1

1

2. Introduzca el recipiente para hemocultivo
en posición recta/perpendicular en elsoporte. El medio de cultivo del recipiente
no debe entrar en contacto con el cierre delrecipiente.
Gracias al vacío creado en el recipiente parahemocultivo, se llena por sí mismo.
Atención: Observe el volumen de llenado.

21G

1
2

42

3. En el caso de que sean necesarias más
extracciones de sangre con la
S-Monovette®, desacople el adaptador
universal de hemocultivo de la aguja
Multiﬂy® de seguridad.

21G

1
2

Importante:s Deben observarse sin falta las instrucciones de manipulación del fabricante delrecipiente para hemocultivo.
s Después de la extracción, el contenido se debe mezclar cuidadosamente.
s No airear los recipientes, no es necesario.
s Enviar lo antes posible los recipientes sembrados a temperatura ambiente allaboratorio.

4.7.3 Volumen de la muestra y número de tubos
Atención:
Durante la extracción el volumen de sangre se debe controlar con ayuda de laescala. El volumen de vacío del recipiente puede ser mayor que el volumen dellenado necesario.
Marcar la altura de llenado en el recipiente antes de la extracción facilita lacomprobación del volumen de llenado de sangre durante la extracción.
La sensibilidad del diagnóstico del hemocultivo depende del número de pares demuestras extraídas y del volumen de las muestras.
Existen diferentes recomendaciones en cuanto a volumen de sangre, número depares de cultivo de sangre y uso de recipientes aerobios y anaerobios.
Por consiguiente, deben tenerse en cuenta las instrucciones del fabricante.

43

5 La extracción desangre enpediatría

Pediatría
La pediatría también se deﬁne como la parte de la medicina que se ocupa de los
niños y adolescentes. Un área importante de la pediatría es la neonatología, esto es,
el tratamiento de los niños prematuros.
La viabilidad de los niños prematuros comienza a partir de la semana 23 de la
gestación, cuando el neonato tiene un peso al nacer de unos 500 gramos.
Estos pequeños pacientes tienen necesidades especiales y plantean grandes
exigencias al personal sanitario y al sistema de extracción.

5.1

Anamnesis24

Los datos de la anamnesis infantil se recaban a través de terceros, por lo general, la
madre o los tutores legales.
A partir de la edad escolar, se debe siempre preguntar al niño directamente.

La anamnesis debe comprender los datos sobres la enfermedad actuals la historia completa del niño
s el embarazo y el partos los antecedentes familiares“Los pacientes pediátricos y de neonatología tienen
necesidades especiales y plantean grandes exigencias
al personal sanitario y al sistema de extracción.”

Importante:
El niño, aunque padezca una enfermedad potencialmente mortal, puede acudir ala consulta mostrando un estado general relativamente bueno. Puede ocurrir unempeoramiento durante el interrogatorio médico, la exploración clínica, o despuésdel ingreso hospitalario.

24

44

Speer et al; Pädiatrie; 2013

45

5.2

Condiciones para la extracción de sangre

Entre el séptimo mes y el tercer año de vida, la resistencia del niño puede impedir
una extracción de sangre normal.

Los siguientes consejos van encaminados a facilitar esta situación:s El tiempo de espera no debe ser largos Las estancias deben ser luminosas, cálidas y adecuadas
para los niños, con juguetes para todos los grupos deedads Ofrecerles pequeños obsequios (especialmente tiritas,
certiﬁcados de buen comportamiento, etc.)
s Crear una atmósfera amigable y comprensivas Si es necesario, tratar al niño sentado en el regazo de su
madres Las manos y los aparatos deben estar calientess Tener en cuenta la vergüenza, incluso en niños de corta
edad

5.3

La extracción de sangre en pediatría

El volumen total de sangre en un recién nacido sano es de unos 300 ml. Un niño
prematuro de 1.000 g tiene un volumen total de sangre de unos 80 ml. Como este
volumen es pequeño, es de vital importancia extraer la menor cantidad de sangre
posible, teniendo en cuenta extraer la cantidad de sangre necesaria para la prueba.
Además, la obtención de la muestra en niños prematuros y recién nacidos así comolactantes puede ser problemática. La elección de la técnica de extracción correcta
combinada con el recipiente de muestra adecuado simpliﬁca estas condiciones
complejas en la medida de lo posible.

46

5.3.1 Extracción de sangre venosa
Para la extracción de sangre venosa se puede escoger entre la extracción cerrada
de sangre venosa y la técnica por goteo (p. ej. en la vena cefálica).
Lugar de lapunción
Vena cefálica

Niño
prematuro
Solo si < 1semanaRecién nacido

Lactante

Niño pequeño

EscolarRecomendable

Recomendable--

Vena braquial

Si es necesario

Si es necesario

Si es necesario

Recomendable

Recomendable

Dorso de lamano

Recomendable

Recomendable

PosibleRecomendable

Recomendable

Dorso del pie

Recomendable

Recomendable

PosibleSi es necesario(doloroso)-

Extracción cerrada de sangre venosa
Gracias a la posibilidad de extracción suave
con la técnica de aspiración (ver el apartado
4: Procedimiento de extracción de sangre venosa),la S-Monovette® pediátrica combinada con la
aguja Multiﬂy® de seguridad constituye
una solución óptima para los casos de venas
difíciles en pediatría.

47

Extracción de sangre por goteo

5.3.2 Extracción de sangre capilar

La micro-aguja junto con losmicrotubos preparados simpliﬁcanla extracción de sangre de la vena
cefálica.
Se evita la difícil manipulación
con agujas Luer separadas.
Las agujas separadas son
pequeñas, de difícil manejo
y pueden causar hemólisis(formación de rebabas en la
aguja).

Para la extracción de sangre capilar se puede utilizar, dependiendo del paciente yde la cantidad de sangre necesaria, la lanceta neonatal de seguridad o la lanceta deincisión de seguridad.

Comparación entre lanceta de seguridad y lanceta de incisión de seguridad
Lanceta estándar:

Lanceta de incisión:s Dirección vertical dedisparo de la cuchillas Punción cilíndricas Formación dehematomas Sección de la punción con
forma de semicírculo
s Menos profundidad de puncións Se impide la formación dehematomas

Manipulación de micro-agujas
1. Retirar la caperuza protectora

2. Sacar la micro-aguja de la funda protectora.
La lanceta neonatal de seguridad es adecuada para la obtención de volúmenes desangre medios o grandes.
3. Desinfectar el punto de punción.
Realizar la punción de la vena y dejar que la sangre
gotee en un microtubo preparado.
Si el ﬂujo de sangre se detiene, la micro-aguja sepuede girar 360° con seguridad sujetándola por lazona de sujeción.
4. Tirar la micro-aguja en el recipiente de eliminación
adecuado.

ModeloProfundidad de laCalibre de la aguja
punción

Volumen desangreNeonatal

1,2 mmFilo de 1,5 mm

medio a altoMini

1,6 mmAguja 28G

pequeño

En el caso de que exista riesgo de lesión en el hueso, son recomendables laslancetas de incisión, ya que estas penetran menos.

48

49

Microvette®

Gama de lancetas de incisión de seguridad
Su técnica de incisión especial hace posible un ﬂujo de sangre óptimo con unalto volumen de sangre y una profundidad de punción reducida. La pequeña
profundidad de punción permite una cicatrización rápida e impide la formación dehematomas.
ModeloÁmbito de aplicación

Profundidad de la punción

Longitud de corte

Neonato1,0 mm

2,5 mmNiños prematuros

0,85 mm1,75 mmExiste una Microvette® para todas lasnecesidades, con forma del recipiente
interno cilíndrica o cónica, y un rango devolumen de 100 a 500 μl. La extracción desangre capilar se puede realizar mediante latécnica capilar o con el borde de recogida.
El diseño especial de la tapa reduce elefecto aerosol cuando se abre.

Manipulación de la lanceta de incisión de seguridad
1

Seleccionar el puntode punción adecuado
y desinfectar.

Después de laactivación del botón
exterior, retirar lalanceta del talón.

4

Técnicas de extracción
xtracción con Microvette®
Existen dos técnicas de extracción para responder a las exigencias individuales deextracción de sangre capilar:➊ Técnica capilar con capilar end-to-end➋ Principio de gravedad con el borde de goteo
2

Retirar el mecanismo deseguridad presionando
lateralmente con el dedo
pulgar.

Eliminar la lanceta
en un recipiente deresiduos apropiado.

5

Tenga en cuenta que

5.4

50

Elevar el pie hasta una posición
adecuada. Presionar la aperturade la cuchilla paralela al puntode punción seleccionado ydesinfectado, y activar el botónde disparo. La lanceta deincisión de seguridad se debe
colocar y activar siempre en
paralelo al sentido longitudinaldel pie (nunca oblicuamente).
La punta del triángulo apunta al
punto por el que sale la cuchilla.

Desechar las primeras
gotas de sangre.
A continuación, llenar elcapilar.

6

200

3

EDTA

la técnica por goteo en un recipiente capilar con
ayuda de una aguja Luer no es una extracción desangre capilar.

Diferencia entre la sangre capilar y la sangre venosa

Para la evaluación de los resultados analíticos es importante tener en cuenta elmaterial de la muestra. Entre la sangre capilar y la sangre venosa existen diferencias
de concentración en distintos parámetros. Por ejemplo, la concentración sérica dela proteína total, bilirrubina, calcio, sodio y cloruro son signiﬁcativamente menores enla sangre capilar que en la sangre venosa.23
La glucosa, el lactato y la CK están más concentrados en la sangre capilar que en lasangre venosa.
23

Kupke et al; On the composition of capillary and venous blood serum; Clin Chim Acta. 112(2):177–85; 5 May 198151

Intervalos normales

AnalitoPaciente

SI

Convencional

Observación

μmol/L

mg/dL

La bilirrubina indirecta
está aumentada en reciénnacidos, entre otros, por
una mayor degradación delos eritrocitos.
Valor >16-18 mg/dl: riesgo
de una encefalopatíabilirrubínica.
En los recién nacidos
la medición directa
fotométrica es posible, enniños sanos la bilirrubina
directa no es detectable.
Los recién nacidos pueden
tener valores aumentados
el primer día de vida.
Elevado, entre otros, por
mitocondriopatías, hipoxias
tisulares.

Bilirrubina(total)Neonato1er día

< 68<42º-3er día

< 154

<9

3er-5º día< 239< 13-14

Lactant.

1,7-140,1-0,8Creatinina

Lactato

Adult.

56

1,7-220,1-1,3mmol/L

mg/dL

Niños/adult.

0,5-2.2

4,5-20

Neonatoμmol/Lmg/dL

1er día

37-1130,41-1,24

1ª semana

14-86

0,15-0,95

4ª semana

12-48

0,13-0,53

Lactant.

22-55

0,24-0,61

Niño peq.

25-64

0,28-0,70

Niños

23-106

0,25-1,17

Adult.

74-1100,81-1,21

Los valores dependen
de la masa muscular; lasmujeres presentan valores
más bajos.
La concentración decreatinina en sueroaumenta solo cuando latasa de ﬁltración glomerular
es <50%.

Hematocrito(HCT/HC)

Dependiendo de la edad del niño, las concentraciones de los analitos tendrán unintervalo de normalidad diferente en comparación con los adultos. Por este motivo
es importante que los resultados de los análisis se valoren siempre con relación alos intervalos normales o de referencia correspondientes a la edad del paciente56.
En la tabla siguiente se muestran algunos parámetros individuales a modo deejemplo.

Eritrocitos

AnalitoHemoglobina
(Hb)

5.5

Paciente

SI

Convencional

Tpt/L(1012/l)106/μl3,9-6,53,9-6,53,6-5,83,6-5,8

Lactant.

3,0-5,4

3,0-5,4

Niño peq./
niño

4,0-5,4

4,0-5,4

Adult. (m)4,5-5,94,5-5,9

Adult. (s)3,9-5,2

3,9-5,2

Fracción I/I%

Neonato0,45-0,6545-65

Lactant.

0,30-0,55

30-55

Niño peq./
niño

0,31-0,48

31-48

Adult. (m)0,39-0,52

39-52

Adult. (s)0,35-0,4735-47mmol/lg/dl

9,3-13,7

15-22

7,8-12,4

12,5-20

Lactant.

5,9-9,9

9,5-16

Niño peq./
niño

6,8-9,911-16

Adult. (m)8,1-11,2

13-18

Adult. (s)7,5-9,312-15

Neonato1ª semana
Neonato2ª semana

Neonato1ª semana
Neonato2ª semana

Observación

Desintegración más rápida
después del parto.
Aumentado (policitemia)
en caso de deshidratacióny durante/después detemporadas a gran altitud.

El HC aumenta en casode deshidratación yse reduce en caso dehiperhidratación.

Kohse et al.; National and international initiatives and approaches for the establishment of reference intervals in pediatric laboratory
medicine; J Lab Med 2015; 39(4): 197-212

52

53

Leucocitos

Trombocitos

AnalitoPaciente

NeonatoConvencional

Gpt/l (109/l)

103 Cells/μl

100-250

100-250

Niño peq.

220-500

220-500

Niños

150-350150-350

Adult.

150-400

150-400

Fracc.

Células/μl

9-35

9.000-35.000

5-20

5.000-20.000

5-18

5.000-18.000

4-10

4.000-10.000

NeonatoDay 1
NeonatoSemana 1-4
Bebé/niño
peq./niño
Adult (m)24

SI

Observación

Trombocitopenia p. ej.
debida a sarampión
30 Gpt/l: mayor tendencia
a hemorragias.

Alteración del número deleucocitos durante lasprimeras semanas de vidao el primer año de vida.
Las elevaciones(leucocitosis) se deben casi
siempre al aumento de losgranulocitos neutróﬁlos.

Valores de referencia dependientes de la edad
(valor de referencia ejemplar)
Edad

TTPa [s]*EdadAntitrombina [%]Dímero D [μg/l]

1-3
Meses

39 (28-49)

1 día

76 (58-90)1470 (410-2470)

4-6
Meses

36 (31-44)

3 días74 (60-89)1340 (580-2740)

7-12
Meses

35 (29-42)

1-12
Meses

109 (72-134)

220 (110-420)

Hasta 4Años

33 (28-41)

1-5 años

116 (101-131)

250 (90-530)

5-9
Años

34 (28-41)

6-10 años

114 (95-134)

260 (10-560)

10-18
Años

34 (29-42)

11-16 años

111 (96-126)

270 (160-390)

Adultos

31 (26-36)

Adultos

96 (66-124)

180 (50-420)

Speer et al; Pädiatrie; 2013
* medido con el reactivo Pathrombin SL
22
Barthels et al; Das Gerinnungskompendium; 2012

5.6

Hemostasia en pediatría

Algunos componentes del sistema de coagulación del niño se modiﬁcan en la
infancia, especialmente en el primer año de vida, con el ﬁn de adaptarse al cambio
en sus condiciones de vida.
Como mecanismo protector, en los recién nacidos existe una menor formación detrombina y al mismo tiempo una menor inhibición de trombina.
En principio, los recién nacidos muestran unos valores considerablemente más bajos
que los adultos para la mayoría de los factores de coagulación. La causa reside en latasa de síntesis hepática más baja del recién nacido, pero también se baraja entre losespecialistas una conversión acelerada, especialmente durante el parto.
Muchos componentes alcanzan después del primer año de vida los valores
normales de los adultos. La antitrombina es un 10% superior que en la edad adulta
desde el primer mes de vida y más adelante también en la infancia. El TTPa en la
infancia suele ser más largo que en los adultos. Los factores II y VII permanecen un
10-20% más bajos.
Tenga en cuenta que

54

Debido a que el hematocrito ﬁsiológico está aumentado, la cantidad de plasma en
recién nacidos es menor.
En este caso no es necesario corregir el hematocrito, dado que se calculan
los valores normales correspondientes a la edad en estas condiciones y no es
necesario realizan ninguna corrección.
Es importante que se extraiga suﬁciente material de muestra para los análisis
necesarios teniendo en cuenta que se obtiene una menor cantidad de plasma.

existen numerosas particularidades ﬁsiológicas en los
niños, de las cuales es preciso ser consciente a ﬁn depoder diferenciarlas claramente de las alteraciones
patológicas.

55

6 Gas en sangre
6.1

Tipo de extracción de sangre

Las extracciones y los análisis de gas en sangre se realizan en muchos ámbitos
sanitarios diferentes, como servicios de urgencia, cuidados intensivos, ambulancias,ámbitos quirúrgicos, catéteres cardiacos y laboratorio de diagnóstico neumológico.
Dado que los parámetros tienen diferentes concentraciones dependiendo del vaso
sanguíneo (la pCO2 es más alta en la sangre venosa, las pO2 y sO2 están menos
concentradas en la sangre venosa que en la arterial), se debe comunicar y tener encuenta el punto de extracción de la muestra (p. ej. acceso arterial, catéter venoso
central, arteria periférica).25 La sangre arterial debe ser siempre el material de análisis
de elección.
En los niños se utiliza a menudo sangre capilar arterializada del lóbulo de la oreja,yema de los dedos o en los lactantes, del lateral del talón.
En los pacientes ventilados, se deben comunicar también los ajustes del equipo deventilación y tenerlos en cuenta.
25

Michael D Davis RRT et al; AARC Clinical Practuce Guideline: Blood Gas Analysis and Hemoximetry: Respiratory Care; 58(10); Oct. 2013

Importante:

Para la medida del calcio en analizadores de gas en sangre(método ISE) se debe utilizar heparina titulada con calcio(balanceada, equilibrada) como en los capilares para gas
en sangre, y la Monovette® de gas en sangre.
Con la Monovette® de gas en sangre no se puede, por tanto,
determinar el valor del calcio total.

“También es válido para la gasometría que cuanto
mejor se haya llevado a cabo la fase preanalítica,más exacto será el resultado”

56

57

6.2

Burbujas de aire

Almacenamiento

Se debe intentar siempre realizar una medición directa después de la extracción dela sangre. Si la medición en un plazo de 15 minutos no fuera posible, la muestra sedebe guardar en frío (a unos 4°C).25
25

Para evitar las mediciones erróneas debidas a la contaminación del aire, lasburbujas de aire se deben eliminar directamente después de la extracción desangre (véase la purga de aire). Cuanto más tiempo se almacene con burbujas
de aire y cuanto más grandes sean, más se alterarán los valores.

Michael D Davis RRT et al; AARC Clinical Practuce Guideline: Blood Gas Analysis and Hemoximetry: Respiratory Care; 58(10); Oct. 2013

Reducido

Elevado

pCO2

pH

Después del almacenamiento, las muestras se deben mezclar cuidadosamente, ya
que la sedimentación puede dar lugar a medidas erróneas de Hb.

pO2

El metabolismo celular puede provocar cambios de concentración cuando el tiempode almacenamiento es elevado.
Reducido

Elevado

pH

pCO2

pO2

CalcioGlucosa

LactatosO2

Extracción de sangre en catéteres
En este caso la contaminación por infusiones o soluciones de lavado constituye unposible riesgo.
Antes de tomar la muestra de sangre se debe prestar atención a desechar elvolumen suﬁciente de sangre.
Contaminación con heparina líquida Contaminación con disolución de NaCl

6.3

Reducido

pO2, Na+, Cl-

ElevadopCo2, K+, Ca++, Gluc, Lac, tHB

Na+, Cl-

Prevención de errores

Coagulación
Las muestras con coágulos no se pueden introducir correctamente en el analizador,
por lo tanto, los resultados no son representativos.

Hemólisis
Las muestras hemolíticas arrojan unas concentraciones elevadas de potasio
erróneas, y de sodio y calcio reducidas.

Posibles causas de hemólisis
Solucións Utilizar heparina dosiﬁcada líquida, ya que esta se mezcla con la muestra con
más rapidez.26
s Mezclar las muestras a fondo nada más extraer la muestra.
s Utilizar el elemento auxiliar de mezcla para los capilares de gas en sangre.

s Fuerzas de cizalla:s Técnica de extracción:s Temperaturas:
26

Gruber et al; Heparin release is insufﬁcient in syringes with platelets as heparin source; Clinica Chimica Acta, 395: 197, 200858

- Se ha agitado demasiado fuerte la muestra al
mezclarla o durante el transporte- Se ha presionado con demasiada fuerza (“milking”)
en el punto de punción durante la extracción desangre capilar arterializada- Calor extremo en verano - Frío extremo, p. ej. congelaciónde las muestras o colocación directa sobre hielo

59

6.4

Técnica de extracción: Monovette® para gas en sangreb2

1

Mezcla de Monovette® para gas en sangre
Al contrario que en la mezcla mediante volteo, que en la S-Monovette estándar la facilita la burbuja de aire, para mezclar
la Monovette® de gas en sangre se debe proceder de la forma siguiente:aColocar el adaptador de membrana (Ref.: 14.1112) sobre el cono Luer de laMonovette® de gas en sangre (a) y conectar la Monovette® de gas en sangre con la
aguja de seguridad (b) o la aguja Multiﬂy® de seguridad.

3®

Mezclar la muestra de sangre inmediatamente después de la extracción haciendo rodar entre las palmas de las manosla Monovette® de gas en sangre. Se debe mezclar preferentemente con el giro entre las palmas de las manos en lugar
de la mezcla por volteo.

Importante:

Los análisis de gas en sangre se deben realizar lo antes
posible tras la extracción de la sangre, como máximo
15 minutos después de la extracción.

Técnica de extracción en capilares para gas en sangre
Para la punción de la piel recomendamos utilizar las lancetas de seguridad: Ref. 85.1015 a 85.1019
Retirar la tapa protectora decolor naranja de la Monovette®
para gas en sangre.

Extraer la muestra de sangre siguiendo sus instrucciones de trabajo. Cuando se
punciona una arteria se recomienda hacerlo con un ángulo de 45°.

1. Seleccionar el punto de punción y favorecer la circulación.
2.

3. Introducir un bastoncito de mezcla en el capilar y deslizarlo hasta
el tapón de cierre recién colocado.

3.

1.

2. Colocar un tapón de cierre a uno de los extremos del capilar.

Purga de aire de la Monovette® para gas en sangre

4. Limpiar el punto de punción con un desinfectante.
Puncionar la piel de forma que se consiga un buen ﬂujo de sangre.
Desechar las primeras gotas. Retirar el tapón colocado.
A continuación, mantener el capilar en posición horizontal y mantenerlo
con un extremo en el centro de la gota de sangre y rellenar el capilar
por completo sin que penetren burbujas de aire.

Con el ﬁn de evitar los errores de medida causados por la contaminación del aire, se debe extraer el aire de laMonovette® para gas en sangre después de la extracción de la siguiente forma:

5. Cerrar bien ambos extremos del capilar con los tapones.
5.

5.

6. Con ayuda del imán, mover el bastoncito de mezcla hacia delante ydetrás a lo largo de toda la longitud del capilar unas 10-15 veces paramezclar la sangre con el anticoagulante.

6.

1
Colocar el desaireador(Ref.: 14.1148) en la
Monovette® para gas en
sangre.

60

2Presionar el émbolo con
cuidado hacia arriba.

3
Retirar y eliminar elpurgador.

4
Para el proceso de mezcla,
colocar de nuevo la tapa
protectora.

7. Justo antes del análisis de la muestra, volver a mezclar.
Después colocar el bastoncito de mezcla al ﬁnal del capilar.
8. Retirar ambos tapones de cierre.
9. Dejar que el aparato aspire la muestra de sangre.

61

7 Seguridad enla extracciónde sangre¿Por qué es importante la seguridad?
Los agentes patógenos más importantes que se pueden contagiar por lesiones
causadas por pinchazos de agujas son el virus de la hepatitis B, el virus de la
hepatitis C y el virus del VIH.
Adoptando las medidas de protección adecuadas se pueden evitar estos
accidentes prácticamente por completo.27
La Directiva europea 2010/32/UE28 sobre prevención de las lesiones causadas por
instrumentos cortantes y punzantes en el sector hospitalario y sanitario exige unentorno de trabajo lo más seguro posible para los trabajadores sanitarios.
27
28

The underestimated workplace accident, infection risk due to needle stick injuries; SAFETY FIRST! initiative
EU Directive 2010/32/EU of the Council of the European Union from 10 May 2010 Prevention of sharps injuries in the hospital andhealthcare sector

Medidas preventivas y de protección“Informar, formar y poner a disposición mediosde trabajo seguros son las claves para evitar
las lesiones causadas por pinchazos de agujas
y el riesgo asociado de infección”

s Introducir fórmulas de trabajo segurass Mantener la higiene generals Vacunas de protección (frente a la hepatitis B)
s Material de protección personal adecuados Llevar guantess Cubrir los cortes y abrasiones con apósitos resistentes al aguas Evitar el uso innecesario de instrumentos aﬁlados o punzantess Tener disponibles instrumentos médicos con mecanismos integrados deseguridad y proteccións Prohibir la reutilización de las tapas protectoras sobre las agujas usadas(no recapuchar).

Nota:

57

62

Más de la mitad de los accidentes por pinchazo se producen
durante la eliminación.57

SAFETY FIRST, Germany - www.nadelstichverletzung.de

63

7.1

Aguja de seguridad

La aguja de seguridad se suministra lista
para el uso, lo cual ahorra el paso demontaje de la aguja en el soporte, lo que
reduce el riesgo potencial de lesiones
causadas por pinchazos de agujas con el
extremo posterior de la aguja.

7.2

Aguja Multiﬂy® dee seguridad

El adaptador de la aguja Multiﬂyy®
de seguridad ya viene premontado
tado yforma una unidad lista para el uso.
En la aguja Multiﬂy® de seguridad
adel manejo con una sola mano delprotector de la aguja brinda una
aprotección máxima durante el trabajo.

Utilización
Después de la extracción de sangre:
Desconectar la última S-Monovette® de la aguja Multiﬂy® deseguridad.

Utilización
Después de la extracción de sangre:

1

Desconectar la última S-Monovette® de la aguja deseguridad y después retirar la aguja de seguridad de lavena.

Sujetar el protector de la aguja por la parte posterior con elpulgar arriba y el dedo índice abajo, y retirar la aguja Multiﬂy®
de seguridad de la vena.

Sujetar la aguja de seguridad por el adaptador, colocar el
protector de la aguja sobre una superﬁcie estable y plana,presionar ligeramente la aguja hacia abajo hasta notarde forma audible con un “clic” que se ha encajado en el
protector de la aguja.

2a

Clic
2b

Clic

Sujetar el protector de la aguja por la parte posterior con
el pulgar y el dedo índice arriba y abajo, y retirar la aguja
Multiﬂy® de seguridad de la vena. Fijar el tubo ﬂexible
presionándolo ligeramente contra la palma de la mano ydesplazar el protector por la aguja...

También puede activar el protector de la aguja con el dedoíndice.
Para que sea seguro actívelo por el extremo inferior de laprotección.

Clic3... hasta notar de forma audible con un ‘clic’ que se habloqueado.

Después de la activación del mecanismo de protección:
Desechar la aguja de seguridad tapada en un recipiente deeliminación.

Después de la activación del mecanismo de protección:
Desechar la aguja Multiﬂy® de seguridad tapada en unrecipiente de eliminación.

Active el mecanismo de seguridad siempre con una sola mano

64

65

7.3

Recipientes para eliminación Multi-SafePara la recogida de objetos cortantes o punzantes se deben poner a disposición
y utilizarse recipientes para residuos que cumplan los reglamentos RBA 250
aplicables (Technische Regeln für Biologische Arbeitsstoffe - norma alemana) y lanorma ISO 23907.
En dichos reglamentos se establecen, por ejemplo, los puntos siguientes:- Forma y aspecto de los recipientes- Ensayos de rotura por caídas a diferentes alturas- Paredes de contenedores seguros frente a la perforación hasta una presiónde 15 NSi los recipientes de eliminación los debe eliminar una empresa de gestión deresiduos y los contenedores deben transportarse a la vía pública, será obligatoria
una certiﬁcación UN del recipiente de eliminación. Los contenedores certiﬁcados se
distinguen por un código UN de varios dígitos que se encuentra en el lado superior
de la tapa. Los recipientes de eliminación sin esta identiﬁcación se deben eliminar
dentro de otros contenedores con identiﬁcación.

Eliminación segura

Recomendación:
Llene el recipiente Multi-Safesolo aprox. 2/3 partes de su
volumen.
No llene excesivamente elrecipiente Multi-Safe:¡Peligro de lesiones!
Observar la línea de llenado

66

2/3
Línea de llenado
respetada
Véase la marca

Ź En principio, cuando se eliminen materiales sanitarios de un solo uso
potencialmente infectados será preciso seguir una eliminación higiénica correcta.

Instrucciones de seguridads Utilice únicamente contenedores del tamaño adecuado para alojar los objetos dedesecho en cuestión.
s La tapa debe montarse y encajarse antes de empezar a llenar el recipiente.
s Sujete el contenedor con el adaptador adhesivo recomendado o fíjelo colgándolodel soporte mural para evitar que se vuelque.
s No utilice la tapa para presionar los objetos eliminados.
s Los bisturíes deben eliminarse con especial precaución en el recipiente. Si se
aplica una fuerza excesiva al introducir o rellenar otros objetos, se corre el riesgo
de ladeo, de rotura de las paredes o del fondo del recipiente.
s Tire los objetos de desecho en el interior del recipiente únicamente en vertical.
s No introduzca a la fuerza ningún objeto en el recipiente.
s No introduzca líquidos en el recipiente.
s No tocar con la mano ni de otra forma el recipiente (¡peligro de lesiones!).
s No tirar, sacudir ni dejar caer el recipiente.
s Antes de sellar el recipiente, asegúrese de que no sobresalga ningún objeto porla abertura.
s Antes de la eliminación del recipiente, compruebe que la tapa está bien cerrada.

Demasiado lleno

67

8 Centrifugación
8.1

Manipulación correcta en centrifugación

Para la mayor parte de los análisis de laboratorio se requiere el componente líquidode la sangre, el suero o el plasma. Para conseguirlo, las muestras de sangre se
centrifugan. Dentro de la centrífuga hay un rotor con cestillas que gira con una
velocidad de varios miles de revoluciones.
Estos giros rápidos hacen que dentro de los cestillas se genere una aceleración
múltiplo de la aceleración gravitatoria (g).
Esto consigue la separación de los componentes líquidos de los sólidos de lasangre.
En este punto es importante distinguir entre el número de revoluciones y elnúmero g (fuerza de gravitación).
El número g es el valor que es relevante para un buen resultado de centrifugación.
Por ello, al conﬁgurar la centrífuga, el valor de g siempre es muy importante.
El número g se puede calcular conociendo el valor del radio (cm) y de lasrevoluciones por minuto (rpm):
g = 11,18 x r x (min-1 /1.000)2
r = radio en cm
min-1 = revoluciones por minuto
Para convertir el valor g en revoluciones por minuto o viceversa,
pueden utilizar nuestra calculadora de centrifugación enwww.sarstedt.com/es/servicios-asesoramiento/calculadora-paracentrifugación.
El radio de la centrífuga se obtiene de los datos proporcionados por el fabricante dela centrífuga o se calcula con el siguiente esquema:

Rotor de ángulo ﬁjo

Rotor basculante“La centrifugación es un proceso de separación
física que se basa en las diferencias de densidad
de las sustancias, por ejemplo, de las células
sanguíneas y del plasma”

68

69

8.2

Diferencia entre rotor de ángulo ﬁjo y rotor basculante

Para las S-Monovette® preparadas con gel recomendamos exclusivamente utilizar
rotores basculantes.
Las cestillas en una centrífuga de ángulo ﬁjo se disponen de forma ﬁja en un ángulo
oblicuo. Las cestillas en una centrífuga de rotor basculante se mueven durante lacentrifugación desde una posición vertical a una horizontal. De esta forma, la fuerza
puede actuar durante la centrifugación de manera uniforme desde el tapón hacia el
fondo del tubo.
Como resultado se obtiene una capa de gel bien formada horizontal.

Rotor de ángulo ﬁjo

Rotor basculante

8.3

Obtención de suero
S-Monovette® Suero-Gel con
granulado recubierto paraacelerar la coagulación

Después de la extracción de sangre se deben coagular las muestras de suero
durante 15-30 minutos.
Esto signiﬁca que al producirse la coagulación, los factores de coagulación (p. ej. laﬁbrina) se agotan y las células sanguíneas se aglutinan formando una torta.
Esta torta adopta la forma en la que se encuentran las células sanguíneas en el
tubo.
Esto signiﬁca que cuando la S-Monovette® se deja tumbada después de la
extracción de sangre, las células sanguíneas sedimentan a lo largo del tubo yadoptan una forma alargada.
Esta ﬁgura creada se compacta durante la centrifugación y tras la centrifugación
adopta una forma de acordeón.
El suero de una muestra así no se puede pipetear de forma automática.
Por ello, es importante almacenar las muestras para suero después de la extracciónde sangre en posición vertical.

70

✓

✗

muestra coagulada depie (recta) después dela centrifugación

muestra coagulada
tumbada después dela centrifugación

71

8.4

Condiciones de centrifugación para S-Monovette®

8.5

Ascensión del gel durante la centrifugación

Recomendación
Rango alternativo Temperatura
estándarPreparación

Min.

S-Monovette®
Suero

10

2.000 x g

1.800 - 2.500 x g

18 - 25°C

S-Monovette®
Suero-Gel*

102.500 x g

2.200 - 3.000 x g

18 - 25°C

S-Monovette®
Li-Heparina

10

2.000 x g

1.800 - 2.500 x g

18 - 25°C

0

1

2

3

4

5

10
Minutos®

S-Monovette
Li-Heparin-Gel*o bien72

1015

3.000 x g
2.500 x g

2.700 - 3.300 x g
2.300 - 3.000 x g

18 - 25°C

S-Monovette®
EDTA-Gel*

102.500 x g

1.800 - 2.500 x g

18 - 25°C

Estos datos de centrifugación tienen mero carácter de recomendación. Los valores
están pensados para las peores condiciones posibles desde nuestro punto devista, p. ej. una centrífuga de diseño antiguo que para alcanzar el valor g requerido
necesita considerablemente más tiempo que una centrifuga de alta calidad. En
algunos casos, por ello, puede ocurrir que con unas condiciones de centrifugación
que se desvían de nuestras recomendaciones se obtengan los mismos resultados.

S-Monovette®
Citrato10

1.800 x g

1.800 - 2.300 x g

18 - 25°C* Para las S-Monovette® preparadas con gel recomendamos utilizar exclusivamente rotores basculantes.

S-Monovette®
Fluoruro/GlucoEXACT

102.000 x g

1.800 - 2.500 x g

18 - 25°C

73

9 ¿Qué es lahemólisis?

Signos de identiﬁcación de hemólisis
A partir de una destrucción del 0,5% de los eritrocitos el suero y el plasma se
colorean.

mg/dl29“La destrucción de los eritrocitos por deterioro
de la membrana celular provoca la liberación dehemoglobina en el plasma o suero, Se aprecia
visualmente una coloración roja del suero o plasma”.

+

++

+++

++++

0

50

150

250

525

Después de la centrifugación se puede apreciar esta coloración rojiza del plasmao el suero. La causa reside en que la hemoglobina, el colorante de la sangre de loseritrocitos, ha salido fuera.
A partir de una concentración de unos 20 mg hemoglobina/dl ya se reconoce lahemólisis en el suero o plasma.
La ausencia de la coloración roja no excluye una interferencia por hemólisis.
La hemólisis, es decir, la destrucción de los eritrocitos, se divide según la causa en:
hemólisis in vivo (patológica) y hemólisis in vitro (física).
29

74

-

CLSI; Hemolysis, Icterus, and Lipemia/Turbidity Indices as Indicators of Interference in Clinical Laboratory Analysis; Approved Guideline;
C56-A; 32(10); 2012

75

9.1

Hemólisis in vivo

9.2

Debido a una enfermedad se puede producir dentro del organismo una
destrucción de los eritrocitos. En estos casos se habla de una hemólisis in vivoo de una anemia hemolítica.
El origen de las enfermedades de este tipo puede ser hereditario o adquirido.

Hemólisis in vitro

Esta forma de hemólisis ocurre fuera del organismo y es responsable de más del
90% de las muestras hemolíticas. La causa se debe buscar siempre en la fasepreanalítica.

Causas frecuentes durante la extracción de sangre
Hereditario

Adquirido

Hemoglobinopatías, p. ej.:anemia de células falciformes, talasemia

neumonía atípica, hemaglutinia fría, anemia
hemolítica autoinmune (AIHA)
Enfermedades autoinmunes, p. ej.: lupues
eritematoide, leucemia linfática crónica (LLC)deﬁciencia de glucosa-6-fosfatodeshidrogenasa

Defectos de la membrana de los eritrocitos(p. ej. esferocitosis hereditaria, o eliptocitosis
hereditaria)

Infecciones (p. ej.: malaria, babesiosis,
clostridium)
Sobrecarga mecánica en el sistema
circulatorio, p. ej.:
Coagulación intravasal diseminada (DIC)
Síndrome urémico hemolítico (HUS)
Púrpura trombótica-trombocitopénica (TTP)
Síndrome de HELLPs Torniquete demasiado apretado o mantenido demasiado tiempos Fuerzas físicas de cizalla (aguja demasiado ﬁna o doblada)s Venopunción traumática (brusca)
s Extracción de sangre de catéteres mediante técnica de vacío15
s Catéter intravenoso combinado con un vacío demasiado elevado31-38
s Soluciones de infusión (dilución, adulteración)
15

Lippi et al.; Prevention of hemolysis in blood samples collected from intravenous catheters Clin Biochem 46: 561–564, 2013

31

Ong, et al. Reducing blood sample hemolysis at a tertiary hospital emergency department. Am J Medicine 2009;122:1054e1–e6.

32

Halm, et al. Obtaining blood samples from peripheral intravenous catheters: best practice? Am J Crit Care 2009;18:474–8.

33

Wollowitz, et al. Use of butterﬂy needles to draw blood is independently associated with marked reduction in hemolysis compared to
intravenous catheter. Ac Emerg. Med 2013;20:1151–1155.

34

ENA’s Translation Into Practice. Reducing Hemolysis of Peripherally Drawn Blood Samples. December, 2012
(Emergency Nursing Association).

35

Heyer et al.; Effectiveness of practices to reduce blood sample hemolysis in EDs: A laboratory medicine best practices systematic review
and meta-analysis; Clin Biochem 45: 1012-1032, 201236

Grant MS; The Effect of Blood Drawing Techniques and Equipment on the Hemolysis of ED Laboratory Blood Samples;
J Emerg Nurs 29:116-121, 2003

37

Straszewski et al J; Use of seprate venipunctures for IV access and laboratory studies decreases hemolysis rates;
Intern Emerg Med 6(4):357-359, 201138

Dugan et al.; Factors Affecting Hemolysis Rates in Blood Samples Drawn from Newly Placed IV Sites in the Emergency Department;
J Emerg Nurs 31(4): 338-345, 2005

Deﬁciencia de piruvato quinasa= enzimopatía eritrocitaria

Quemaduras

Drogas, toxinas

Transfusión de sangre de grupo sanguíneo
diferente

30

Lippi et al; In vitro and in vivo hemolysis, an unresolved dispute in laboratory medicine; 201276

Causas frecuentes después de la extracción de sangres Mezcla o agitación muy vigorosas Inﬂuencia del transporte (carga mecánica demasiado fuerte, p. ej. correo
neumático)s La muestra es demasiado vieja (a medida que envejece la muestra crece el riesgo
de hemólisis)s Enfriamiento, calentamiento o congelación demasiado fuertes

77

9.3

Consecuencias de la hemólisis

9.4

Se ven afectados los parámetros siguientes:

Liberación del contenido celular - diferencias de concentración
Durante la hemólisis, las sustancias
presentes en los eritrocitos en altas
concentraciones (concentración
intracelular) pasan al suero o plasma(concentración extracelular) debido
a la destrucción de la membrana
celular de los eritrocitos. Comoconsecuencia se obtienen resultados
elevados erróneos.

HierroImportancia clínica

K+

Hemólisis ligera (* 30-60 mg/dl):
LDH, K, AST, ALT

LDH

Hemólisis moderada (* 60-200 mg/dl):
Troponina*, ß-HCG, glucosa, CK, TP, TTPa,
Dímero D (*dependiendo del método)

ALT
AST

Hemólisis alta (* 200 mg/dl):
todos los parámetros

Liberación del contenido celular - interferencia óptica
Durante la hemólisis también se libera en el suero o plasma hemoglobina, el color
rojo de la sangre. Esto puede dar lugar a señales erróneas de medida en los análisis
fotométricos debido a la absorbancia del hierro de la hemoglobina.
Señal de medida errónea = resultado erróneo

39

Lippi et al Hemolyzed specimens: a major challenge for emergency department and clinical laboratories,
Crit Rev Clin Lab Sci 48:143–153, 2011

Liberación del contenido celular - interferencia especíﬁca del método
Los métodos individuales de medida se pueden ver afectados o alterados por las
enzimas procedentes de las células.
Contenido celular liberado

Análisis afectados

Hemoglobina libre

Bilirrubina

Adenilato quinasa

CK, CK-MB

Hidrolasa

Coagulación

Tenga en cuenta quelos resultados analíticos se alteran debido a lahemólisis y no reﬂejarán la situación real del paciente.
Esto puede provocar errores de diagnóstico ymedidas terapéuticas erróneas o innecesarias,o la falta de dichas medidas.

En muchos casos se requiere una nueva extracción de sangre para determinar losvalores analíticos correctos.
Esto causa molestias evitables al paciente, pérdida de tiempo y aumento decostos.31,40,41,42

Liberación del contenido celular: modiﬁcación del volumen
En los casos de hemólisis acusada, dentro de la muestra tiene lugar un aumento de
volumen de la parte líquida (dado que apenas quedan células o no queda ninguna).
Esto provoca la dilución del suero o plasma.

78

31

Ong, et al. Reducing blood sample hemolysis at a tertiary hospital emergency department. Am J Medicine 2009;122:1054e1–e6.

40

Cadamuro et al; The economic burden of hemolysis; CCLM 201541

Jacobs et al; Cost of hemolysis; AnnClinBiochem 2012; 49: 412–413

42

P Jacobs et al; Haemolysis Analysis; An Audit of Haemolysed Medical Admission Blood Results; AcuteMed 2010; 9(1): 46-47

79

10 Almacenamiento
y transporte

10.1

Transporte de las muestras

Para un almacenamiento, unas condiciones de transporte y un envío de muestras
correctos es preciso cumplir la normativa vigente sobre transporte43, 44, así comotener en cuenta la estabilidad de los parámetros individuales. Esto requiere una
organización precisa.
Importante:

43

P650 IATA/ADR

44

TRBA 100

El responsable del envío de las muestras y de laelección del sistema de transporte adecuado es el remitente.

Transporte de muestras conforme a las instrucciones de embalaje
P650 de ADR & IATA

“El transporte y almacenamiento de las muestras sedebe escoger de forma que los resultados analíticos nose vean afectados”

80

Antes del transporte de una muestra de material
biológico líquido de la categoría B en cajas ymaletas de transporte se deberá averiguar silas muestras se transportarán por carretera,
ferrocarril o vía aérea.
Especialmente para estos medios de transporte
se aplica la norma de embalaje P650, que ﬁguraen ADR (Accord européen relatif au transportinternational des marchandises Dangereuses por
Route para transporte por carretera y ferrocarril) y
en la IATA (International Air Transport Associationpara transporte aéreo).
Esta norma especiﬁca que el transporte demuestras debe constar de un embalaje formado
por 3 componentes:
s Recipiente primario (hermético)s Recipiente secundario (hermético)s Embalaje exterior (rígido: con unas medidas mínimas de 100 x 100 mm; rotulado
como “MATERIAL BIOLÓGICO, CATEGORÍA B” con la marca UN “UN3373”
inscrita en un rombo de medidas mínimas 50 x 50 mm)
Además, el recipiente primario o secundario deben poder soportar una presión
interna de 95 kPA sin perder el contenido. También debe disponerse un material
absorbente entre el recipiente primario y el secundario que sea capaz de absorbertodo el volumen de llenado.

81

Transporte interno / TRBA 100
Para que el transporte de muestras internooguro,
de agentes y materiales biológicos sea seguro,
se debe llevar a cabo en receptáculos detransporte cerrados, dimensionalmenteestables, a prueba de rotura, herméticosa los líquidos y desinfectables desde elexterior, y que se puedan rotular de forma
rtos
permanente. Además no pueden ser abiertos
uivocación.44
por efecto de inﬂuencias exteriores por equivocación.

10.2 Inﬂuencia de la temperatura,el tiempo y el metabolismo celular
Los resultados de medida cambian en cuanto a concentración debido a lainestabilidad de los parámetros individuales y por el metabolismo celular. Además,ciertos esfuerzos mecánicos o físicos pueden provocar cambios en los materiales
de las muestras.

Metabolismo celular44

La sangre es un material vivo. Porconsiguiente, también después de la
extracción de sangre tienen lugar procesos
metabólicos en el recipiente de la muestra,
esto es, el metabolismo celular.

TRBA 100

Transporte de “muestras médicas autorizadas”

Tenga en cuenta quela sangre está viva.

Las muestras que no se clasiﬁcan como sustancias
infecciosas de la categoría A o B, no necesitan ajustarsea la normativa ADR / IATA, pero se deben embalar de laforma siguiente.
Embalaje de 3 componentes formado por:s Recipiente primario (hermético al agua)s Recipiente secundario (hermético al agua)s Embalaje exterior (medidas mínimas de 100 x 100 mm; rotulado como
“MUESTRA MÉDICA AUTORIZADA” o como “MUESTRA VETERINARIAAUTORIZADA”)
También en este caso debe colocarse un material absorbente entre el recipiente
primario y el secundario que sea capaz de absorber todo el volumen de llenado.
La P650 es, por lo general, igual en ambas normas.
Excepción82

Las cajas de envío y maletas de transporte que se utilizan
para el envío de muestras de sustancias biológicas de lacategoría B, deben ensayarse conforme a las instrucciones
de embalaje P650.

Inﬂuencia del almacenamiento sobre las diferentes magnitudes
Magnitud

Valor

LactatoAumenta

Amoniaco

Aumenta

Potasio

Aumenta

Glucosa

Desciende

pCO2

Desciende

Los cambios en los valores pueden evitarse, según el parámetro, conestabilizadores especiales en las diferentes preparaciones o por separación física
(gel, ﬁltro Seraplas®, creación de alícuotas).

83

Inﬂuencia de la temperatura de almacenamiento sobre la glucosa y el
potasio

Conservación y transportes Trasladar las muestras de sangre lo más rápidamente
posible al laboratorio y analizarlas.
s Después de la centrifugación, los geles deseparación o los ﬁltros impiden la difusión desustancias desde los eritrocitos al suero o plasma.

GlucosaTemperatura dealmacenamiento
4 °C

90
80
70
mg/dL

60
Temperatura dealmacenamiento
23 °C

50
40
30
20

La sangre completa sin separación de suero oplasma con gel o ﬁltro no se debe congelar bajo
ninguna circunstancia.
La consecuencia sería una hemólisis total.

Temperatura dealmacenamiento
30 °C

10
0
0

2

4

6

8

24

48

Horas
5

Sarstedt; Tips & Techniques in Preanalytics; 2014

Bioquímica clínica:

Potasio
Temperatura dealmacenamiento
4 °C

12
10
mg/dL

8

Temperatura dealmacenamiento
23 °C

6
4

Temperatura dealmacenamiento
30 °C

2
0
0

2

4

6

8

24

48

Horas
5

Sarstedt; Tips & Techniques in Preanalytics; 2014

Tenga en cuenta que

84

no existe una temperatura ideal. Las muestras
recientes y correctamente obtenidas permitenconseguir resultados correctos.

s Cuando el almacenamiento vaya a ser prolongado, el suero se debe conservar enrecipientes cerrados a 2-4°C .
s Para periodos más largos, las muestras de suero o plasma se pueden almacenara -20°C.
s En trayectos de transporte largos se deben utilizar contenedores de transporte
especiales para frío.
s Para algunos análisis el transporte debe ser rápido (p. ej. el amoniaco debe
realizarse en 15 min.).

Diagnóstico de la coagulación:s El transporte de muestras para el diagnóstico de la coagulación se debe llevar acabo por principio a temperatura ambiente (18-25°C).6

Hematología:s La sangre con EDTA para un hemograma sencillo se puede almacenar hasta 24
horas a temperatura ambiente (18-25°C).45
6

G. Ender et al; The importance of preanalytics for the coagulation laboratory; Hämostaseologie 2/2010; 30: 63-70

45

N. Tatsumi et al; Specimen Collection, Storage, and Transmission to the Laboratory for Hematological Tests; International Journal of
Hematology 75; 261-268; 2002

85

Lista de comprobación para el transportes Cerrar las muestras (evaporación)s Almacenar el suero o plasma a 4-8°C
s Conservar de pie
s Conservar el EDTA para hemograma a temperatura
ambiente
s Evitar congelar y descongelar varias vecess Las magnitudes sensibles al sol deben protegerse dela luz solar (p. ej. la bilirrubina)s Utilizar la preparación especial para estabilización

Observando los consejos siguientes, se puede llevar a cabo el transporte por correo
neumático de las muestras sin inﬂuir de forma signiﬁcativa sobre los valores.50,51s Velocidad máxima de 5 m/ss Perﬁles y radios “suaves”
s Frenar “suavemente” antes de las curvass Utilizar elementos amortiguadores en los cartuchos de correo neumático
s Zonas de salida horizontales y lentass Enviar las muestras de suero solo después de realizar la coagulación

Transporte mediante correo neumático
Los sistemas de transporte mediante correo neumático pueden reducir
notablemente el tiempo entre la extracción de sangre y los resultados del análisis.46
Sin embargo, no es cierto que cuanto más rápido, mejor. Los sistemas detransporte mal ajustados pueden provocar hemólisis y activar la coagulación.47,48,49
A modo de control se comparan, entre otros, los valores de LDH, potasio, recuentode leucocitos, TTP y dímero D con y sin transporte mediante correo neumático.

46

Koessler et al; The preanalytical inﬂuence of two different mechanical transport systems on laboratory analysis; Clin Chem Lab Med;
49(8): 1379 1382; 2011

50

Koçak et al; The effects of transport by pneumatic tube system on blood cell count, erythrocyte sedimentation and coagulation tests;
Biochemia Medica;23(2):206-10; 2013

47

Kratz et al; Effects of a pneumatic tube system on routine and novel hematology and coagulation parameters in healthy volunteers;
Arch Lab Med; 131: 293 6; 2007

51

Tiwari et al; Speed of sample transportation by a pneumatic tube system can inﬂuence the degree of hemolysis; Clin Chem Lab Med;
50(3):471-474;201248

Sodi et al; Pneumatic tube system induced haemolysis: assessing sample type susceptibility to haemolysis; Ann Clin Biochem;
41:237 40; 2004

49

Steige et al; Evaluation of pneumatic-tube system for delivery of blood specimens; Clin Chem; 17:1160 4; 1971

8687

11 Extracción desangrecapilar¿Qué es la sangre capilar?
La sangre capilar es una mezcla de líquidos formada por la sangre de las arteriolas,vénulas y capilares, así como por los ﬂuidos intersticiales e intracelulares.
Tenga en cuenta que

esta mezcla de líquidos, debido a su composición, no
se puede utilizar para realizar un análisis exacto de lacoagulación. Por ello no se ofrecen recipientes
capilares con preparación de citrato.

Campos de aplicación de la extracción de sangre capilars Pediatrías Geriatría
s En adultos para análisis de gas en sangre, glucosa y determinaciones de lactatos Pruebas en el lugar de atención al paciente (POCT)

Criterios de exclusión para la extracción de sangre capilars Cantidades > 1 ml (p. ej. para hemocultivo)s Análisis de la coagulacións Inﬂamacioness Estado de shock del paciente

11.1“Especialmente en pediatría y en los análisis POCT,
tiene una especial relevancia la obtención de lamuestra de las yemas de los dedos, el talón o ellóbulo de la oreja”

Procedimiento de extracción de sangre capilar➊ Preparación- Materiales- Paciente- Punto de la punción➋ Punción➌ Extracción de la muestra

88

89Resumen de materiales

Ventajas del calentamiento del punto de puncións Guantes
s Hisopos Desinfectante cutáneos Lanceta desechable semiautomática (lanceta de seguridad)
s Recipiente para la muestra (capilares para gas en sangre, Microvettes, capilaresde bilirrubina, etc.)
s Recipiente para eliminación Multi-Safes Dado el caso, tirita (no necesariamente recomendable en el caso de niños
pequeños debido al riesgo de asﬁxia)

s Aumento del ﬂujo sanguíneo hasta 7 vecess Requisitos previos para los análisis capilares de gas en sangre

Preparación del paciente
s Identiﬁcar al paciente
s Informar al paciente del objetivo de la extracción y del procedimientos Seleccionar el punto de puncións Activar la circulación en el punto de punción si fuera necesario por calentamiento

Puntos de punción➊ Yemas de los dedos➋ Talón

➌ Lóbulo de la oreja

La activación de la circulación produce una arterialización de la sangre capilar, y con
ello da lugar a una comparabilidad aceptable con los valores medidos en la sangre
arterial.

Procedimiento de calentamiento del punto de puncións Envolver el pie o la mano del paciente en un paño humedecido a 39-40°C.
s Conviene introducirlo en un guante de goma.
s Dejar puesto 3-5 minutos.
s Para en análisis de gas en sangre capilar en adultos se puede frotar el lóbulo dela oreja con una pomada de efecto hiperemiante.

Punción y extracción de la muestras Ponerse guantess Desinfectar la piel
- Desinfectante- Secar al aire (hasta que el desinfectante se haya secado por completo)s Sujetar correctamente para inmovilizar el dedo o el pie
s Puncionar con una lanceta de seguridad

Advertencias importantess Desechar las primeras gotas de sangres Mantener el punto de punción mirando hacia abajos Evitar difuminar la gota de sangres Sujetar correctamente el recipiente de la muestras Evitar presionar con mucha fuerza repetidamente (milking)
Provoca hemólisis y la contaminación de las muestras con ﬂuido tisular90

9111.1.1 Lanceta y lanceta de incisión de seguridad

Gama de lancetas de seguridad

Los productos estériles de un solo uso evitan las lesiones causadas por pinchazosde agujas, ya que la aguja y la cuchilla antes y después del uso se mantienen
siempre de forma segura dentro de la carcasa de la lanceta.
El botón de disparo seguro impide el disparo accidental e involuntario y ladesactivación del sistema.
Además, las lancetas de seguridad y las lancetas de incisión de seguridad cumplen
las Directivas europeas 2010/32/EU28, BioStoffV52 y TRBA 25053.

Los 5 modelos de lancetas de seguridad ofrecen una variedad de tamaños de aguja
y cuchilla con diferentes profundidades de punción, para la punción de los dedos, ellóbulo de la oreja y el talón.

28

EU Directive 2010/32/EU of the Council of the European Union from 10 May 2010 Prevention of sharps injuries in the hospital andhealthcare sector
Biological Agents Regulations – BioStoffV; regulations on occupational health and safety at workplaces using biological working materials
from 15 July 2013
53
TRBA 250 Biological working materials in the healthcare sector and social welfare organisations; Edition of March 2014 amended on
21.7.2015, GMBI no. 29

ModeloMini

Normal

Extra

Super

Neonatal

Profundidadde punción

1,6 mm

1,8 mm

1,8 mm

1,6 mm

1,2 mmCalibre de la
aguja

28 G

21 G

18 G

Filo de1,5 mmFilo de1,5 mmVolumen desangrepequeño

medio

medio a alto

alto

medio a alto

52

Gama de lancetas de incisión de seguridad
Su técnica de incisión especial hace posible un ﬂujo de sangre óptimo con un alto
volumen de sangre con una profundidad de punción baja. La baja profundidad depunción permite una cicatrización rápida e impide la formación de hematomas.
Modelo92Ámbito de aplicación Profundidad de punción

Longitud de corte

Neonato1,0 mm

2,5 mmNiños prematuros

0,85 mm1,75 mm93

Utilización de la lanceta de seguridad

11.1.2 Orden de llenado y técnicas de extracción con Microvette®

La superﬁcie aplanada de sujeción permite sujetar bien la lanceta de diferentes
formas y gracias a las aletas y a su carcasa con surcos.

1

Existe una Microvette® para todas lasnecesidades, con su forma interna derecipiente cilíndrico o cónico y un rango devolumen de 100 a 500 μl. La extracción desangre capilar se puede realizar mediante latécnica capilar o con el borde de recogida.

1. Desenroscar la tapa protectora(1/4 de vuelta).

El diseño especial de la tapa reduce elefecto aerosol cuando se abre.

23

2. Mantener la lanceta de seguridad contra elpunto de punción seleccionado previamente
desinfectado. Su pequeña y transparente
superﬁcie de contacto permite una punción
precisa. Presionar el botón de disparo.

3. Tirar la lanceta de seguridad en el recipientede eliminación adecuado.

Microvette® – Orden de extracción54
EDTA
Heparina-Litio /Heparina-Litio-Gel

4

Fluoruro

4. Desechar las primeras gotas de sangre
y a continuación recoger la sangre.

Suero / Suero-Gel

54

94

CLSI Procedures and Devices for the Collection of Diagnostic Capillary Blood Specimens; Approved Standard – 6th edition GP42-A6(formerly H04-A6); 28 (25) 200895

Técnicas de extracción con Microvette®

B. Extracción de sangre con el borde de recogida

Existen dos técnicas de extracción para responder a las exigencias individuales deextracción de sangre capilar:

1

1. Retirar el tapón de cierre con un pequeño giro.

2➊ Técnica capilar con capilar end-to-end➋ Principio de gravedad con el borde de goteo

EDTA K

Tenga en cuenta quela técnica por goteo en un recipiente capilar con
ayuda de una aguja Luer no es verdaderamente una
extracción de sangre capilar.

500

EDTA K

3. Recoger la sangre que sale gota a gota con elborde de recogida.

3

A. Técnica capilar con capilar end-to-end
1. Mantener la Microvette® vertical o ligeramente
inclinada y absorber la gota de sangre con elcapilar end-to-end.

50

0

K
TA
ED

200

1

2. Encajar el tapón de cierre en el fondo delrecipiente.

500

EDTA

4

4. Quitar la tapa de cierre del fondo del recipiente
y cerrar la Microvette® (posición “clic”).

5500

2. La extracción de la sangre habrá concluido
cuando el capilar se haya llenado porcompleto con sangre.

K
EDTA

2

5. Mezclar la muestra a fondo pero con cuidado.

500

200

EDTA K

EDT
500

EDTA
K

®

3

3. Mantener la Microvette vertical de forma
que la sangre pueda descender al recipientede recogida.

4

200

EDTA KEDTA K200

5

4. Quitar con un pequeño giro la tapa con elcapilar y desechar ambos.
5. Retirar la tapa de cierre colocada del fondo delrecipiente y cerrar el recipiente (posición “clic”).

6200

6. Mezclar la muestra a fondo pero con cuidado.

K
EDTA

200

EDTA
K

200

96

97

11.2 Condiciones de centrifugación en la extracción desangre capilar
Recomendación
Min.
Rango
Temperatura
estándar(alternativo) alternativo

Preparación

Min.

Microvette® Suero
Microvette® CB 300 Suero
Multivette® Suero5

10.000 × g

102.00010.000 × g

20°C

Microvette® Suero-Gel*Multivette® Suero-Gel*

510.000 × g

104.00010.000 × g

20°C

11.3

Minivette® POCTLa Minivette® POCT sirve para la extracción desangre capilar en diagnósticos rápidos en lacabecera del paciente (también denominado
POCT).
El POCT (Point of care testing) o el diagnósticorápido en la cabecera del paciente es sinónimo dediagnóstico rápido sin preparación de reactivos nimaterial de análisis.
La Minivette® POCT está disponible en distintos modelos y se pueden seleccionardiferentes volúmenes y preparaciones para la obtención de sangre completa capilar,
saliva u orina.

Manipulación de la Minivette® POCT®

Microvette Heparina
Microvette® CB 300 Heparina 5
Multivette® Heparina

2.000 × g

102.00010.000 × g

20°C

La Minivette® POCT sirve para la recogida y emisión directa de muestras depequeño volumen. La manipulación sin gotas permite una obtención sencilla y laemisión directa de la muestra, se trata de una transferencia sin gotas a la tarjeta deltest o a los recipientes de muestra.

Microvette® Heparina-Gel*Multivette® Heparina-Gel*

510.000 × g

104.00010.000 × g

20°C

1

Microvette® Fluoruro
Microvette® CB 300 Fluoruro
Multivette®

52.000 × g

102.00010.000 × g

20°C

1. La Minivette® POCT se sujeta lateralmente porlas aletas de sujeción y se mantiene en
posición horizontal o ligeramente inclinada.
Cuando se recogen las gotas de sangre
con el extremo del capilar, no se debe cerrar
el oriﬁcio de ventilación situado al ﬁnal delémbolo. No presionar el émbolo y rellenar elcapilar sin burbujas.
2. La extracción de sangre concluye de forma
utomática cuando el capilar está lleno desangre hasta el ﬁltro tope de color blanco.

2

Estos datos de centrifugación tienen mero carácter de recomendación. Los valores
están pensados para las peores condiciones posibles desde nuestro punto devista, p. ej. una centrífuga de diseño antiguo que para alcanzar el valor g requerido
necesita considerablemente más tiempo que una centrífuga de alta calidad. En
algunos casos, por ello, puede ocurrir que con unas condiciones de centrifugación
que se desvían de nuestras recomendaciones se obtengan los mismos resultados.
Los datos sobre las condiciones de centrifugación también se encuentran siempre
en la etiqueta de la caja interior.
* Para los recipientes preparados con gel recomendamos exclusivamente utilizar rotores basculantes.

98

3a

3b

3a. Situar el extremo del capilar sobre el campodel test y, presionando suavemente el émbolo,
desprender el contenido por completo sobrela tarjeta del test.
3b. La muestra también se puede trasladar a un
microrrecipiente de muestras.

99

12 Obtención demuestrasde orina

12.1

Obtención de la muestra

Todos los tipos de muestras de orina requieren una manipulación higiénica que
observe las siguientes reglas:s Se debe informar al paciente sobre la forma correcta de recoger la muestra deorina.
s Antes de la recogida de la muestra se debe lavar a fondo las manos y las zonasíntimas del paciente y a continuación eliminar los restos de jabón.
s A ﬁn de evitar las contaminaciones, cuando sea posible, se deben tomar las
muestras de orina de la micción media.
s La orina se debe recoger en los vasos de recogida o recipientes desechables.55
s Los recipientes deben estar limpios y secos, y para los análisis bacteriológicos,
además, estériles.
s Los recipientes se deben rotular cuidadosamente con un rotulador indeleble a ﬁn
de evitar confusiones.
s Evitar la recogida de orina durante o poco tiempo después de la menstruación(ya que esto contamina la orina con sangre).
55

CLSI Urinalysis; Approved Guideline – 3rd edition GP16-A3; 29(4) 200912.2 Almacenamiento y transporte
Las muestras de orina no se deben exponer a la luz directa del sol ni al calor.
El análisis se debe realizar en el plazo de las dos primeras horas. Si esto no es
posible, la orina se debe almacenar a una temperatura de +4°C a +8°C.

“Ya en el 400 a. de C. Hipócrates estudió el olor y elcolor de la orina, y hoy en día aún desempeñan
los análisis de orina un papel fundamental en laspesquisas diagnósticas”

Los tiempos de espera prolongados pueden provocar las siguientes alteracioness Desintegración de leucocitos y eritrocitoss Crecimiento bacterianos Reducción de glucosa por las bacterias
Antes del análisis, las muestras deben estar a temperatura ambiente y justo antes
de usar la tira reactiva mezclarse bien.
Dependiendo del parámetro a medir, se debe emplear el estabilizador
correspondiente para almacenamiento.

100

101

12.3 Tipos de análisis

Estudios de bioquímica clínica

La orina se puede analizar de diferentes maneras.
A continuación describimos algunos de los métodos más comunes:s:

Los estudios de bioquímica clínica permiten unos resultados cualitativos más
especíﬁcos para los análisis de cribado (p. ej. en el embarazo), en la determinación
diagnóstica en enfermedades cardiacas, hepáticas o renales, así como en tumores.

12.3.1 Prueba de tiras reactivas
Las tiras reactivas permiten, dependiendo del número de campos
reactivos, la comprobación de diversos valores, como por ejemplo,
peso especíﬁco, hemoglobina, glucosa, pH, proteína, leucocitos,
etc. La información obtenida por comparación del cambio de color
en el campo reactivo solo constituye un primer indicador que debe
precisarse mediante otros análisis.
Es importante que la tira reactiva se humedezca suﬁcientemente yen toda su superﬁcie y que después, antes de la lectura, se hayasecado. Se deben respetar los tiempos de incubación indicados.
Esta información la pueden obtener de los datos del fabricante.

Evaluación del sedimento urinario
El sedimento urinario es una preparación de la orina para realizar la evaluación
ación
microscópica o la citometría de ﬂujo de los componentes sólidos de la orina. Esto
brinda datos sobre posibles enfermedades renales o de las vías urinarias.
Para la formación del sedimento urinario se centrifuga una parte deﬁnidade la muestra de orina (p. ej. 10 ml, durante 5 min a 400 x g), se decanta elsobrenadante, de forma que queden unos 0,5 ml de orina, el sedimento se mezcla
con el resto de la orina y a continuación se estudia microscópicamente.
Con el microscopio se pueden analizar, por ejemplo, los siguientes parámetros:s Células, como eritrocitos, leucocitos, células renales, etc.
s Cilindros, como cilindros granulados, cilindros hialinos, cilindros demucoproteínas, etc.
s Otros elementos, como levaduras, bacterias, cristales en la orina

102

Mediante los análisis de bioquímica clínica se pueden analizar, por ejemplo,
los siguientes parámetros:
Electrolitos, creatinina, Į2-macroglobulina, Į1-microglobulina, proteínas deBence-Jones, glucosa, ácido 5-hidroxiindolacético, inmunoglobulinas, proteínas,catecolaminas, porﬁrina, ácido vanililmandélico (AVM)

Análisis microbiológico
Si se sospecha una infección de las vías urinarias después deun resultado positivo de la tira reactiva o un sedimento deorina llamativo, será obligatorio llevar a cabo una determinaciónnde gérmenes (diferenciación y recuento de microorganismos
y más tarde controles de tratamiento de antibiosis). Esto
proporciona información sobre el tipo y la cantidad de agentes
patógenos (en su mayoría bacterias o virus).
IMPORTANTE:

La obtención de la muestra se debe
llevar a cabo antes de iniciar el tratamiento
ento
antibiótico.En los controles posteriores,s,comunicar al laboratorio losdatos de antibiosis.

Determinación de drogas
La determinación de drogas es un análisis delicado debido a lass consecuencias que
puede tener un resultado positivo.
La orina se utiliza a menudo como material de muestra, puesto que su recogida es
sencilla y las drogas y sus metabolitos se pueden detectar bien y bastante tiempo
después del consumo (en comparación con la sangre y la saliva). Sin embargo, laorina también es fácilmente manipulable.
A menudo las personas adictas a una droga intentan generar resultados negativos.
Esto se puede conseguir bebiendo mucho, proporcionando la orina de otra
persona, añadiendo ácidos o mezclando con otros líquidos del color de la orina(p. ej. zumo de manzana, bebidas energéticas, etc.).

103

12.4 Tipos de muestras de orina

Dentro de la recogida de orina de micción media, se puede diferenciar entre:

Dependiendo del momento temporal y de la forma de recogida, se puedediferenciar entre diversos tipos de muestras de orina.

Primera orina de la mañana
Los componentes de la primera orina de la mañana están más concentrados.

Orina de micción media
En principio, la obtención de una muestra de orina de micción media es
recomendable para conseguir una muestra lo más pura posible

Obtención correcta de la muestra
1. Lavar y secar correctamente las manos y losgenitales externos.

1s Campos de aplicación:
Adecuada para análisis bacterianos, tiras reactivas, sedimento, análisis dequímica clínica y diagnóstico de proteínass Ventaja:
Debido al tiempo prolongado de permanencia en la vejiga, la orina de la mañana
es adecuada para determinar los nitritos y las proteínas.

Segunda orina de la mañana
La segunda orina de la mañana brinda de forma más ﬁdedigna los valores promediode los distintos parámetros y en algunos casos se puede tomar en lugar de la orina
de 24 horas.
2. Dejar que ﬂuya la primera orina (a) y a continuación
recoger la micción media en el vaso de orina (b). El
resto de la orina también se elimina por el inodoro (c).
Así se evitan las impurezas.

2s Campos de aplicación:
Tiras reactivas, glucosa, proteínas Desventaja:
No es adecuado para el ensayo de nitritos

c

a
100
00 ml

75/40

90
80
70

Orina espontánea

60
50
40
30
20

b

10

3

3. Cerrar bien la tapa.

En este caso la orina se puede recoger en el momento que se desee. La recogida
espontánea de orina es adecuada en caso de sospecha de infección de las víasurinarias o intoxicación.

Tenga en cuenta ques es especialmente importante para los análisis
microbiológicoss Premisa: el paciente debe poder colaborar

104s Campos de aplicación:
Es suﬁciente para muchos parámetros químicos y microscópicoss Ventaja:
Es fácil de obteners Desventaja:
Errores de dilución: se debe tener en cuenta siempre el peso especíﬁco(densidad) para realizar una evaluación correcta

105

Orina de punción vesicalLa punción de la vejiga se realiza suprapúbicamente
observando estrictas medidas de esterilidad. Debido
al carácter invasivo de la obtención de la muestra,este método alberga un riesgo mínimo decontaminación de la muestra, sin embargo
se realiza con poca frecuencia.
Sin embargo, en pediatría este método compensa
las desventajas de la obtención clásica de orina(especialmente para el análisis bacteriano).

Orina de 24 horas
Trocar separable
Catéterurinario

Hueso púbico
UretraPróstata
VejigaOrina de catéter
En la obtención de muestras a partir de catéteres se puede distinguir entre catéteres
desechables y catéteres permanentes.

Orina de catéter desechable
La recogida de orina mediante cateterismo desechable
se realiza en muy pocas ocasiones, dado que es dolorosopara el paciente y el riesgo de infección es elevado.

En este caso la orina se recoge en su totalidad a lolargo de un periodo de 24 horas. La recogida a lo largode este periodo de tiempo permite compensar las
oscilaciones de concentración de los parámetros que
se dan durante las horas del día.
Los campos de aplicación típicos de la orina de
24 horas son, por ejemplo, la determinación decatecolaminas o el aclaramiento de creatinina.
Para la determinación de catecolaminas y de otros
parámetros inestables, es necesario añadir a la orina
un estabilizador (p. ej. HCl al 20%).
Para ello tenemos a su disposición productos listos
para el uso, como el UriSet 24.

Volumen acumulado de orina
Puesto que en la mayoría de los casos el paciente recoge él mismo la orina, es
indispensable instruirle para que lleve a cabo una manipulación correcta.
Para ello, el volumen del recipiente es muy importante. Los estudios han
demostrado que los recipientes de 2.000 ml solo resultan suﬁcientes para el 60%
de los casos.
Volumenen litros

Volúmenes de 116 recogidas de orina de 24 h en litros

3 litros

Orina de catéter permanente
Para los pacientes que tienen un catéter permanente,este tipo de recogida de la orina es el método más sencillo
e higiénico. No obstante, la orina se debe tomar del adaptadorador
especial colocado en el tubo ﬂexible y no de la bolsa de recogida.
cogida.

Tenga en cuenta que

106para ﬁnes diagnósticos no sedebe tomar orina de la bolsa
de orina.

91,4 %

Número de donantes

Esto quiere decir que en estos casos se debe utilizar un segundo recipiente y quede ambos se debe rellenar entonces un tubo de muestra. En ambos tubos se debe
anotar la cantidad de orina que hay en el recipiente de recogida. Después en ellaboratorio se mezclará la orina de ambos tubos en la proporción correspondiente.
A ﬁn de evitar este procedimiento potencialmente inexacto, se debe utilizar
directamente un recipiente de recogida con un volumen de 3.000 ml.

107

12.5 Manipulación de sistemas de recogida
de muestras de orina
Procedimiento de recogida de la orina de 24 horas

Monovette® orina
La Monovette® orina es adecuada para la obtención de la muestra, el transporte, el
análisis y la centrifugación.
1

2

3

COMIENZO
S
M

10 ml

2
4
6

S
M

10 ml

8

4

2

Bacteriology

SA
Mo

6

Urine Z

810 ml

1. Desechar la primera orina dela mañana
Anotar la hora, por ejemplo,
7:00 de la mañana

Z

108

logy

IMPORTANTE:

BacterioFin(24 horas)

2

Urine

Time 5:00
6:00
7:00
8:00
9:00
10:00
11:00
12:00
13:00
14:00
15:00
16:00
17:00
18:00
19:00
20:00
21:00
22:00
23:00
24:00
1:00
2:00
3:00
4:00
5:00
6:00
7:00
8:00
9:00
10:00

4

Bacteriology

10/06
6

Urine Z

8

Abfall

2. Recoger la segunda orina
de la mañana y si es necesario
añadir el estabilizador
3. Recoger toda la orina ymezclar
Sumergir la punta en el
recipiente y tirar de laMonovette® orina hasta
la línea base.
.
.
.

Mantener la Monovette® orina
con la punta hacia arriba ytirar del émbolo hacia abajo
hasta el tope hasta vaciar la
punta de aspiración.

Retirar la punta, romperel émbolo y tapar.

Monovette® orina con ácido bórico
4. Recoger la primera orina dela mañana al día siguente ala misma hora anotada del día
anterior por ejemplo, las
7:00 de la mañana

Durante el periodo de recogida, el paciente debe beberalrededor de 1,5 a 2 litros repartidos a lo largo del día.
Es preciso lavarse bien las manos y las partes íntimas
de nuevo antes de cada recogida y aclarar los restosde jabón.

Con un volumen de llenado de 10 ml, laconcentración de ácido bórico es de 1,5%. Los
microorganismos se estabilizarán hasta 48 horas
a temperatura ambiente.
Importante:s Observar el volumen nominals Mezclar bien después de añadir la orinas No es adecuada para análisis químico-clínico,tiras reactivas, etc.

109

V-Monovette® orina
Gracias al empleo de un sistema cerrado, se mejora considerablemente la higiene yla comodidad tanto para el paciente como para el usuario.

C: Tomar la etiqueta de seguridad de la tapa ydespegarla del recipiente de recogida.
No tocar la zona de recogida de la tapa.
¡Peligro de lesiones!

C

A: Sumergir la unidad de transferencia en la muestra
de orina.

A

El frasco de recogida se coloca sobre una superﬁcie
horizontal con el asa mirando hacia arriba.
Introducir el tubo en la zona de extracción y presionar
ﬁrmemente.

1200 ml

Conectar la V-Monovette® en la unidad detransferencia y presionar ﬁrmemente hasta que laaguja perfore el tapón.
700 mlA

1200 ml

B: Despegar la etiqueta de seguridad de la zona de latapa.
No tocar la zona de recogida de la tapa.
¡Peligro de lesiones!

B

B

Para pequeñas cantidades de recogida, entre 700 y
1.200 ml, la V-Monovette® orina también sepuede rellenar por la parte superior.
Para cantidades de recogida < 700 ml, se debe abrir
el frasco de recogida.
A continuación la orina acumulada se transﬁere a un
vaso.

Colocar primero la V-Monovette® con la tapa de cierre
en la zona de extracción y presionar ﬁrmemente.
El tubo se llena él solo con la orina. Retirar el tubo
cuando se detenga el ﬂujo.

Mezclar la V-Monovette® de orina con la preparación,
por ejemplo, ácido bórico.
/Exp.

110

111

13

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112

113

14

IndiceTécnica de goteo
Borde de recogida
ECA (enzima convertidora de la angiotensina)Ácido acetilsalicílico (AAS)
Adrenalina
Albúmina
Aldosterona
Fosfatasa alcalina (FA)
Alcohol
Abstinencia de alcohol
ALT, alanina aminotransferasa (GPT)Amoniaco, NH3+
AmilasaAnamnesis
Fosfato inorg.
Antitrombina (AT III)
TTPa (tiempo de tromboplastina parcial activado)
Acceso arterial
Sangre arterial
Fármaco (véase también medicamento)
Técnica de aspiración
AAC (ácido acetilsalicílico)
AST, aspartato aminotransferasa (GOT)AT III (antitrombina, antitrombina III)
Rotor basculante
Bacterias
Variables controlables
Proteínas de Bence Jones
Bilirrubina
Ritmo biológico
Orina de punción vesical
Persona que realiza la extracción de sangre
Extracción de sangre arterial, técnica de extracción
Extracción de sangre venosa
Extracción de sangre venosa, de catéter
Extracción de sangre venosa, ﬁnalización
Extracción de sangre venosa, realización
Extracción de sangre venosa, técnica de extracción
Extracción de sangre venosa, con aguja de mariposa

114

47
51, 95, 97
15
16
14, 15, 16
16, 17, 31, 103
17
12, 13, 14, 16
15, 2929
14, 15, 16, 17, 31
83, 8512, 14
11, 1416
55
19, 54, 55, 79, 86
57
57
16, 19, 21, 29, 38
33-37, 39, 47
16
15, 16, 17, 19, 31, 78, 79
55
69, 70, 73, 98
19, 102, 103
14-17
103
13, 14, 16, 17, 19, 31, 51, 52, 78, 86, 90
13
106
21
60
20-43, 47-48
38-39, 59, 77
34
28-43
20, 37, 46, 60
27, 32, 42, 43, 47, 60, 65

Extracción de sangre venosa, con la aguja Safety
Extracción de sangre venosa, preparación
Extracción de sangre capilar
Extracción de sangre capilar, procedimiento
Extracción de sangre capilar, técnica de extracción
Extracción de sangre capilar, preparación
Extracción de sangre venosa para diagnóstico decultivo de sangre
Técnica de extracción de sangre capilar
Técnica de extracción de sangre venosaGas en sangre
Análisis de gas en sangre, desaireación
Análisis de gas en sangre, técnica de extracción
Análisis de gas en sangre, coagulación
Análisis de gas en sangre, hemólisis
Análisis de gas en sangre, almacenamiento
Coagulación de la sangre
Adaptador para cultivo de sangre
Diagnóstico de cultivo de sangre
Sedimentación de la sangre (VSG = velocidad desedimentación globular)
VSG (sedimentación globular, velocidad desedimentación globular)b-carotínicos
CadmioCannabis
ACE (antígeno carcinoembrionario)
Cloruro (Cl-)
Colesterol (Chol)
Gonadotropina coriónica (b-HCG)
CK (creatina quinasa)
CK-MB
Cl- (cloruro)
Cortisol
Orina de catéter permanente
Dímero D
Diuréticos
Revoluciones y valor de g
Revoluciones/min
Consumo de drogas
Determinación de drogas
Inﬂuencia del almacenamiento de las muestras

26, 29, 32, 33, 34, 36, 60, 64
9, 21
49-51, 57, 58, 59, 61, 88-99
61, 89-91, 96-97, 99
61, 96-97
89-91
26, 40-43
61, 96-97
20, 37, 46, 60
56-61, 89, 91
59, 6060, 61
58
59
58
8, 58
42-43
40-43
12, 2512, 251515
14
15
14, 51, 59
12, 13, 14, 15, 17, 19, 31
79
12, 16, 31, 51, 78, 79
78
14, 51, 59
14, 15, 16
106
55, 79, 86
16
69, 72, 98
69
14
103
58, 83, 84, 85, 101

115

Variables
Variables, controlables
Variables, no controlables
Orina de catéter desechable
Hierro (Fe)Factores de inﬂuencia endógenos
Capilar extremo a extremo
Orden de extracción de sangre, capilar
Orden de extracción de sangre, venosa
Técnicas de extracción, capilar
Técnicas de extracción, venosa
Decisiones clínicas
Contenedor para residuos deEpinefrina
Células epiteliales
Alimentación
Primera orina de la mañana
Eritrocitos
Etiquetado
Factores de inﬂuencia exógenos
Código de color
Fe (Hierro)
Errores en preanalítica
Rotor de ángulo ﬁjo
Fibrinógeno
Ácido fólico
Muestra médica autorizada
Liberación de los contenidos celulares
Estimulantes
Análisis de coagulación
Diagnóstico de la coagulación
Proteínas totales
Sexo
Glucosa
Deﬁciencia de glucosa 6-fosfatodeshidrogenasa(deﬁciencia de G-6-PDH)
GOT, aspartato aminotransferasa, ver AST
GPT, alanina aminotransferasa, ver ALT
Granulocitos
Hematocrito (HCT, HC)
Hematología

116

10
14-17
12-14
106
12, 31, 78
19
51, 9695
26
61, 96-97
20, 37, 46, 60
8
48, 50, 64, 65, 66-67
17
102
11, 17105
17, 19, 25, 52, 53, 74, 75, 76, 78, 85, 101, 10224
19
23
12, 31, 78
7, 8, 18, 113
69, 7015, 2515
82
78
15, 1625, 2785
12, 17, 31, 51, 102, 103, 105
12, 1314, 16, 17, 25, 31, 51, 58, 59, 79, 83, 84, 89,
101, 102, 103, 105
76
15, 16, 17, 19, 31, 78, 79
14, 15, 16, 17, 31
15, 5413, 15, 17, 19, 25, 53, 55
25, 85

Hemoglobina (Hb)
Hemoglobinopatías
Hemólisis
Hemólisis, in vitro
Hemólisis, in vivo
Factores de riesgo de hemólisis
Hemostasia, pediatríaÁcido úrico
Sedimento de la orina (ver sedimento urinario)
Urea
Infección de las vías urinarias
HDL
Células de levadura
HeroínaÁcido 5-hidroxindolacético (5-HIAA)
Hiperbilirrubinemia = ictericia
Hiperlipoproteinemia = metabolismo lipídico
Identiﬁcación de la persona que realiza la extracción
Identiﬁcación de la muestra
Identiﬁcación del médico peticionario
Ictericia
Inmunoglobulinas
Transporte interno
Hemólisis in vitro
Hemólisis in vivo
Riesgo de infección
Infusión
Insulina
Potasio (K+)
Calcio (Ca++)
Catecolaminas
Orina de catéter
Diferenciación de microorganismos
Recuento de microorganismos
Cafeína
Comunicación
Posición corporal
Actividad físicaCreatinina
Creatina quinasa (CK)13, 25, 53, 58, 59, 74, 75, 78, 102
76
8, 18, 19, 32, 38, 39, 48, 59, 74-79, 85, 86, 91
77
76
77
54-55
14, 16, 17, 19
102, 103
14, 16, 17
103, 105
13, 15, 17
102
14
103
19
19
22
23
22
18, 1910382
77
76
62, 106
19, 38, 59, 77
14, 1614, 16, 17, 19, 26, 29, 31, 32, 59, 78, 79, 83,
84, 8616, 17, 26, 27, 31, 51, 57, 58, 59
103, 107
106
103
103
16
9, 21
17
16
12, 14, 16, 17, 19, 31, 52, 103, 107
12, 16, 31, 51, 78, 79

117

Cristales (orina)
Cobre
Almacenamiento
LactatoLactato deshidrogenasa (LDH)
Laxantes
LDH (lactato deshidrogenasa)
Colesterol LDL
Edad
Leucocitos
Lipemia
Lipasa
Linfocitos
Magnesio (Mg++)
CHCM (concentración de hemoglobina corpuscular
media = mean corpuscular hemoglobin concentration)
VCM (volumen corpuscular medio de los eritrocitos =mean red cel volumen)
Medicamentos (ver también fármacos)
Mg++ (magnesio)
Estudios microbiológicos de orina
Orina de chorro medio
Monocitos
MorﬁnasNa+ (sodio)
Lesiones causadas por pinchazos de agujas
Sodio (Na+)
Neonatología
Nicotina
NitritoNoradrenalinaIntervalo normal, pediatría
En ayunas
P650
Pediatría
Identiﬁcación del paciente
pCO2
Penicilina
pH
Fenobarbital
FósforoPLAP (AP placentaria)

118

102
15
58, 59, 80-87, 101
25, 51, 52, 58, 59, 83, 89
19, 78, 79, 86
16
19, 78, 79, 86
13, 1513, 52, 54, 55
12, 15, 25, 54, 86, 101, 102
18, 1914
15
16, 3215
15
16, 19, 21, 29, 38
16, 32
103
101, 104-105
15
14
14, 16, 19, 31, 51, 59
62, 63, 64, 92,
14, 16, 19, 31, 51, 59
45
15
105
14, 15, 16
52-55
1, 18, 21, 29
81, 8244-55, 88-99
21, 22, 40
57, 58, 59, 83
16
58, 59, 102
16
17
15

PlasmapO2
POCT
La población
Porﬁrina
Error preanalítico
Preparación
Muestras para bioquímica clínica
Identiﬁcación de las muestras
Almacenamiento de muestras
Transporte de las muestras
Prolactina
PSA (antígeno prostático especíﬁco)
TTP (tiempo de trombina = TT)
Puntos de punción, extracción de sangre capilar
Puntos de punción, extracción de sangre venosa
Fosfato de piridoxal
Piruvato quinasa
Quick (tiempo de tromboplastina = TTP, tiempo deprotrombina)
ReninaTransporte de muestras por correo neumático
Productos de seguridad
Orina de 24 h
Embarazo
Selenio
SepsisSuero
sO2
Peso especíﬁcoOrina espontánea
Tiempo de constricción
Factores que alteran los resultados
Oscilación rítmica diaria
Test de tiras reactivas
TG (Triglicéridos)
Trombina
Tiempo de trombina (TTP, TT)
Tiempo de tromboplastina = TTP (Quick)Tiempo de tromboplastina parcial activado (TTPa)

13, 16, 25, 29, 55, 68, 69, 74, 75, 78, 85, 86
57, 58, 59
88, 9912
103
7, 8, 18, 113
19, 25, 27, 72, 83, 86, 89, 98, 99
25, 8523, 2421, 58, 80-87
81-87
14, 1519
19, 25, 79
90
30
15
16, 7616, 2514, 1777, 86-87
26, 27, 29, 32, 33, 34, 36, 42, 47, 49, 50, 60,
61, 62-67
107
12, 45, 103
154051, 52, 69, 71, 72, 74, 75, 78, 85, 86, 87, 95,
98
57, 59102
105
30, 3118-19
14
101, 102, 103, 105, 109
12, 15, 17, 31
54
19, 2516, 2519, 54, 55, 79, 86

119Trombocitos
Tiroxina
Consejos en caso de venas difíciles
Volumen muerto
TRBA 100
TRBA 250
Triglicéridos (TG)
Troponina
TSH (tirotropina)
TT (tiempo de trombina, TTP)
Revoluciones/min
Variables no controlables
Llenado insuﬁciente
Muestra de orina
Volumen acumulado de orina
Sedimento de orina (ver sedimento urinario)
Técnica de vacíoÁcido vanilmandélico (VMA)
Punción venosa
Torniquete venoso
Instrucciones de embalaje y transporte de muestras
Arrastre de aditivos/preparación
Vitamina B12
Vitamina B6
Vitamina D
VMA (ácido vanilmandélico)
Metabolismo celular: Temperatura, tiempo
Centrifugación
Condiciones de centrifugación, capilar
Condiciones de centrifugación, venosa
Ritmo circadiano
Catéter venoso central
Segunda orina de la mañana
Cilindros (orina)_1-microglobulina_2-macroglobulina`-HCG (gonadotropina coriónica)
a-glutamil transferasa (a-GT, GGT)

120

54
14
32, 47
27
81, 8266, 92
12, 15, 17, 3179
14
19, 25, 79
69
12-14
8, 27
100-110
107
102, 10336, 37, 39, 77
14, 15, 103
29, 30, 47, 48, 77
30-31
81, 8219, 2612
15
13
14, 15, 103
58, 83
7, 21, 68-73, 75, 85, 98, 109
98

15

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Preanalítica” de los ámbitos de la extracción de sangre venosa, extracciónde sangre capilar y recogida de orina solamente tienen un mero carácter derecomendación y en ningún caso sustituyen el consejo médico, cientíﬁco o técnico.
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72, 73
14
19, 40, 57
105
102
103
103
79
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