Polygon400
製品説明
株式会社インターメディカル特⻑
任意の照射形状・サイズ
多波⻑
複数領域の同時照射
照射パターンの⾼速切換え
多くの顕微鏡に対応
外部装置と同期
サードパーティのカメラに対応

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アプリケーション
シングルセルオプトジェネティクス
サブセルオプトジェネティクス
⾃由⾏動下のオプトジェネティクス
皮質のオプジェネティクス
フォトアクティベーション
フォトブリーチング
アンケイジング
フォトパターンニング

2018/07/11

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デジタルミラーデバイス(DMD)• DMDは、数千のマイクロミラーで構成され、各ミラーを個別に制御可能

2018/07/11

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DMDの利点
複数領域に異なる図形を同時照射
⾼空間分解能照射パターンの⾼速切換え
低価格・簡単な組込み

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顕微鏡への組込み
倒⽴顕微鏡:インフィニティパス
正⽴顕微鏡:インフィニティパス
マルチポート:E,Gシリーズ
Ｃマウント:E,Gシリーズ
Nikon-LAPP:Gシリーズ

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インフィニティパス
正⽴顕微鏡

Nikon, Olympus, Leica, or Zeiss upright
Zeiss D1/Z2
Zeiss A1

倒⽴顕微鏡

Olympus IX Models
Olympus IX73/IX83 Models
Nikon Eclipse Ti
Nikon Eclipse Ti2
Nikon TE2000
Zeiss or Leica Inverted
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サブステージマウント
サブステージを使用して、透過光源に使用可能

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マルチポート(MPI)の特⻑
1ポートは、広視野照明用に標準3mmコア
液体ライトガイドを接続
既存の光源とライトガイドを使用可能

もう1ポートは、パターン照明用に
Polygon400を接続

Polygon400の “E”と “G”モデルに対応

交換可能なフィルタキューブは、標準サイズのダイクロイック

フィルタキューブにオプションの励起フィルタを取り付け可能
2018/07/11

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マルチポート(MPI)のアプリケーション
バックポートが落射蛍光で占有されている倒⽴型顕微鏡に使用
落射蛍光がない正⽴顕微鏡に使用

広視野およびパターン化された照明能⼒の両⽅を顕微鏡に追加可能

Mightex OASIS Macro/Micro/Implant
システムに使用
システム構成に柔軟性を提供

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モデル
モデル

Eシリーズ

Gシリーズ

DPシリーズDLシリーズ

光源

内蔵LED

外部光源
ライトガイド接続

外部光源
ライトガイド接続

外部光源
ファイバー接続

波⻑数

1-3

無制限

無制限

無制限

波⻑範囲

400-700nm

400-700nm

350-700nm

400-700nm

照射領域（倍率x10）

広域0.8mm x 1.4mm

広域
0.8mm x 1.4mm

狭域
0.4mm x 0.7mm

広域
直径0.98mm

分解能（倍率x10）

⾼分解能 1.6μm

⾼分解能 1.6μm

超⾼分解能 0.8μm

⾼分解能 2.04μm

顕微鏡マウント

Infinity path
Cマウント

Infinity path
Cマウント

Infinity path

Infinity path

Neuroscience Optogenetics,
Cell Biology Optogenetics,
Photoactivation,
Photoconversion,
Calcium Imaging

Neuroscience Optogenetics,
Cell Biology Optogenetics,
Photoactivation,
Uncaging,
Photopatterning,
Optical Section,
Super Resolution

In Vivo Optogenetics,
Cortex-Wide Optogenetics,
Photoactivation,
Uncaging,
Photobleaching

アプリケーション2018/07/11

Neuroscience Optogenetics
Cell Biology Optogenetics,
Photoactivation,
Calcium Imaging

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照射領域

a. 標本の照明領域とピクセル解像度を計算するには、下記数値を対物レンズの倍率で割算
b. Polygon400-DLは円形の照明領域で、他のモデルは⻑⽅形の照射領域
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制御＆タイミング

2018/07/11

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ソフトウェア＆システム

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PolyScanソフトウェア• GUIインターフェースで照射パターンの設定が簡単• 照射パターンのシーケンスをアレンジ可能• 時間的な照射パターンを定義可能• 外部機器と同期可能• サンプル動画：
https://www.mightexbio.com/prod
ucts/polygon400/polygon400-2/
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Photostimulation:
Neuroscience Optogenetics
オプトジェネティクスは、ニューロン活動を操作するための手法
選択的な光発⽣発現ニューロン（例えばChR2、NpHr、Chrimsonなど）を刺激可能
複数の単一細胞に同時にオプトジェネティクスが可能
電気⽣理学的記録やカルシウムイメージングと同期可能

2018/07/11

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Neuroscience Optogenetics 構成例
特⻑• シングルセルの分解能• 電気⽣理/Caイメージングと同期• 多くの顕微鏡に対応

コンポーネンツ(1) Polygon400(2) 顕微鏡アダプタ(3) 追加光源(4) 光源コントローラ(5) カメラ2018/07/11

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Photostimulation:
Cell Biology Optogenetics
Optogeneticsは、細胞⽣物学者に前例のない時空間分⼦および細胞制御を提供するように拡張した。
細胞の移動から遺伝⼦調節または発達過程まで、細胞⽣物学者は、オプトジェネティク
スを用いて、個々の細胞の⽣物または亜細胞領域内の特定の細胞において、特定の⽣物学的応答を驚異的な精度で引き出すことができるようになりました。

2018/07/11

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Cell Biology Optogenetics 構成例１
特⻑
•
•
•
•

１波⻑ (e.g.CRY2)
サブセル分解能
イメージング機器と同期
多くの顕微鏡に対応

コンポーネンツ(1) Polygon400(2) 顕微鏡アダプタ(3) 追加光源(4) 光源コントローラ(5) カメラ2018/07/11

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Cell Biology Optogenetics 構成例２
特⻑
•
•
•
•
•

２波⻑ (e.g. PHYB/PIF, Dronpa)
サブセル分解能異なる波⻑で2ケ所を刺激可能
イメージング機器と同期
多くの顕微鏡に対応

コンポーネンツ(1) Polygon400(2) 顕微鏡アダプタ(3) 追加光源(4) 光源コントローラ(5) カメラ2018/07/11

20

Photostimulation:
Photo-activation,conversion,switching
光活性化可能な蛍光タンパク質は、非蛍光状態から特定の波⻑の光のもとで蛍光状態に活性化することができる。
例えば、一般的に使用される光活性化可能なGFP（PA-GFP）タンパク質
は、405nm光での活性化の際に暗状態から蛍光状態への遷移を受ける。
光活性化可能な蛍光タンパク質を、目的の他のタンパク質と融合させることにより、移動速度・⽅向をモニターすることができる。

2018/07/11

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Photostimulation:
Photo-activation,conversion,switching
光変換可能な蛍光タンパク質は、特定の波⻑の光で活性化されると、ある吸収/発光スペクトル状態から別の吸収/発光スペクトル状態に不可逆的に遷移する。
緑⾊〜⾚⾊の光変換タンパク質が最も一般的であり、例えば、Kaede、
Dendra2、Eosなどがあります。
光変換は、時間の経過とともに同時に同じタンパク質集団の2つの画分の動きをモニターできるという点で、光活性化より利点があります。

2018/07/11

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Photostimulation:
Photo-activation,conversion,switching
光交換可能な蛍光タンパク質は、異なる波⻑の光のもとで非蛍光状態と蛍光状態との間を可逆的に遷移する。
最も一般的に使用される光交換可能なタンパク質は、Dronpaであり、これは405nmで緑⾊蛍光状態に移⾏し、488nmで非蛍光状態に不活性化される。
光交換により、細胞の複数の領域で標識されたタンパク質を繰り返し監視することができます。

2018/07/11

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Photo-activation,conversion,switching
構成例
特⻑
•
•
•
•

任意の形、⼤きさ、複数領域における⾼強度光活性
⾼強度レーザーとPolygon400 DL
を一緒に使用
イメージング機器と同期
多くの顕微鏡に対応

コンポーネンツ(1) Polygon400(2) 顕微鏡アダプタ(3) 追加光源(4) 光源コントローラ(5) カメラ2018/07/11

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Photostimulation:
Uncaging
ケージド化合物は，⽣理活性物質などのリガンドを光分解性のケージング基（保護基）と結合させた化合物です。
近紫外フラッシュランプやレーザー照射または二光⼦励起用
近⾚外パルスレーザーなどによりケージング基が光分解して、リガンドをレセプター付近に放出することが可能です。
歴史的には、UV照射（例えば、2-ニトロベンジル基）下での光分解
現在のケージングは多様化して、可視光および近⾚外光（例えば、クマリンベースおよびヘプタメチンシアニンフルオロ
フォアベースのグループ ）で活性化可能です。

2018/07/11

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Uncaging 構成例
特⻑
•
•
•
•

任意の形、⼤きさ、複数領域における⾼強度アンケイジング
405nm⾼強度レーザー/ハイパ
ワー365nm UVLEDとPolygon400 DLを一緒に使用
イメージング機器と同期
多くの顕微鏡に対応

コンポーネンツ(1) Polygon400(2) 顕微鏡アダプタ(3) 追加光源(4) 光源コントローラ(5) カメラ2018/07/11

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Photobleaching - FRAP細胞の亜細胞領域内の蛍光融合タンパク質を、不可逆的に光退⾊させる。
隣接する蛍光タンパク質の、光退⾊領域への移動を測定することにより、目的のタンパク質の移動分画およびその拡散定数（タンパク質移動速度）を測定することができる。

2018/07/11

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Photobleaching - iFRAP
興味のある⼩さな領域を除いた全細胞を、不可逆的に光退⾊させる。
関⼼領域内で蛍光消失をモニターし、目的のタンパク質の移動分画およびその拡散定数（タンパク質移動速度）を測定することができる。
FRAPの逆(Inverse)

2018/07/1128

Photobleaching - FLIP
関⼼のある第2の関⼼領域（ROI＃2）における蛍光損失を監視しながら、関⼼のある⼩さな領域（ROI＃1）の一定の光退⾊によって、細胞内の異なる領域間の接続を確⽴するためにFLIPを使用することができる。
蛍光損失がROI＃2内で観察される場合、関⼼のある蛍光タンパク質がROI＃2からROI＃1に拡散することができることを示す。

2018/07/1129

Photobleaching 構成例
特⻑
•

•
•
•

任意の形、⼤きさ、複数領域における⾼強度フォトブリーチング
405nm⾼強度レーザーとPolygon400 DLを一緒に使用
イメージング機器と同期
多くの顕微鏡に対応

コンポーネンツ(1) Polygon400(2) 顕微鏡アダプタ(3) 追加光源(4) 光源コントローラ(5) カメラ2018/07/1130

Photopatterning:
Cellular Microenviroment 細胞微⼩環境
細胞外微⼩環境の主要因は細胞外マトリックス（ECM）
ECMは、細胞の移動、分裂、増殖、分化などの挙動に影響
光誘導⽣化学化合物の出現により、光マ
イクロパターンおよびフォトリソグラ
フィーによってECMの⽣化学的および構造的特徴を定義することが可能
光マイクロパターンは、UV光で非接触に細胞微⼩環境を作成可能
2018/07/11

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Cellular Microenviroment 構成例
特⻑
•
•
•
•

任意の形、⼤きさ、複数領域における⾼強度アンケイジング
ハイパワー365nm UVLEDとPolygon400 DLを一緒に使用
イメージング機器と同期
多くの顕微鏡に対応

コンポーネンツ(1) Polygon400(2) 顕微鏡アダプタ(3) 追加光源(4) 光源コントローラ(5) カメラ2018/07/1132

⾃由⾏動下の Optogenetics
Deep-Brain, Cortex

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⾃由⾏動下のSingle-Cell Optogenetics+ Calcium Imaging 構成例
特⻑
•
•
•
•
•
•

フリームービング
カルシウムイメージング (GCaMP, RCaMP)
シングルセルオプトジェネティクス(ChR2, Chrimson,
NpHr など)
超軽量ヘッドマウント
イメージング機器、⾏動科学機器と同期
皮質、深部領域をプローブ可能コンポーネンツ(1) OASIS Implant プラットフォーム(2) Polygon400(3) 追加光源(4) 光源コントローラ(5) カメラ(6) イメージファイバー(7) ヘッドマウント + GRINレンズ

2018/07/1134

⾃由⾏動下の Widefield Optogenetics+ Calcium Imaging 構成例
特⻑
•
•
•
•
•
•

フリームービング
カルシウムイメージング (GCaMP, RCaMP)
ワイドフィールドオプトジェネティクス(ChR2,
Chrimson, NpHr など)
超軽量ヘッドマウント
イメージング機器、⾏動科学機器と同期
皮質、深部領域をプローブ可能コンポーネンツ(1) OASIS Implant プラットフォーム(2) 光源(3) 光源コントローラ(4) カメラ(5) イメージファイバー(6) ヘッドマウント + GRINレンズ

2018/07/1135

⾃由⾏動下の Calcium Imaging 構
成例
特⻑
•
•
•
•
•

フリームービング
カルシウムイメージング (GCaMP, RCaMP)
超軽量ヘッドマウント
イメージング機器、⾏動科学機器と同期
皮質、深部領域をプローブ可能コンポーネンツ(1) OASIS Implant プラットフォーム(2) 光源(3) 光源コントローラ(4) カメラ(5) イメージファイバー(6) ヘッドマウント + GRINレンズ

2018/07/11

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Single-Cell Resolution
Optogenetic Spiking• (a) Illustration of highly targeted optical stimulationof a single ChR2-mCherry expressing neuron in themouse somatosensory cortex. Using a small (25 μm
diameter), low-powered (3 mW) spot of illumination
centred on the target cell, action potentials could be
induced in current clamp (top trace), without any
indication in voltage clamp of post-synaptic currents
caused by spiking in other neurons (bottom trace).
(b) Illustration of illumination with a large (125 μm
diameter), high-powered (15 mW) spot. Multiple
spikes were induced in current clamp, and voltage
clamp traces showed evidence of post-synaptic
currents caused by spiking in other neurons.
• Courtesy Matthew Tran & Dr Blake Richards,
University of Toronto, Canada.

2018/07/11

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ChR2 Assisted Circuit Mapping(CRACM)• (A) Image of an acute brain slice
prepared from a Thy1-ChR2-EYFP mousewith ChR2 expression in L5 pyramidal
neurons. Whole-cell patch clamp
recording from a L2/3 cell.
(B) Light-activated excitatory
postsynaptic potentials (EPSPs) triggeredby patterned illumination of a 10×10 gridwith 473 nm LED.
(C) Colormap of the activation pattern.
(D) Histogram of automatically measured
responses from all cells in a grid.
Objective lens is 10X.
• Courtesy Qiuyu Wu & Dr Alexander
Chubykin, Purdue University, USA.
2018/07/11

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Optogenetic Stimulationof Synaptic Inputs• Light-evoked inhibitory
postsynaptic current (IPSC)
recorded in a transgenic miceexpressing ChR2 in GABAergic
neurons. The postsynaptic cell
is non-GABAergic (ChR2
negative) and blue lightstimulates GABAergic afferents
expressing ChR2. Blue bars
indicate the time of lightillumination. Spot 1 illuminatedby Polygon400 evoked reliable
IPSCs whereas Spot 2 caused
no response.
• Courtesy Dr Wataru Inoue,
University of Western Ontario,
Canada.

2018/07/11

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Mapping Optically Induced Depolarization in ChR2expressing Hippocampal Neurons using Polygon400• E18 Sprague-Dawley rat neurons weretransduced with CamKII-ChR2-GFP lentivirus.
Somatic activity was recorded via whole-cellpatch-clamp electrophysiology. Each field was
illuminated by the Polygon400 at 100%
power and 20ms exposure time. Intensity ofmagenta pattern represents depolarization
with respect to the instantaneous resting
potential prior to stimulation with the
Polygon’s 470nm LED. In the image, green
represents the magnitude of GFP signal andblack represents the fluorescence intensity ofAlexaFluor 594 backfilled by the patch pipette.
• Courtesy Dr Jacob Robinson, Rice University,USA.

2018/07/11

40

Photopatterning of an Acrylate Film
• A 50 um film of liquid tetra (ethylen glycol)
diacrylate, containg 1 wt% Irgacure 819
photointiator was irradiated through a glass
coverslip, using the Polygon400 and a 400nm
LED light source to project a pattern onto thefilm surface. (A) Projection of CU logo image
using the 400nm LED and a 4X objective. (B)Brightfield image of the resulting pattern inthe film. Photopolymerization causes a largechange in refractive index in the resin,allowing immediate visualization of the pattern.
Standard development techniques could
subsequently be performed by washing thefilm in solvent to remove the unexposed areasof liquid resin.
• Courtesy Gayla Berg, University of Colorado,USA.
2018/07/11

41

Achieving Subcellular Resolution of Input Activation in a
250um-thick Acute Cortical Section Using the Polygon400• NMDA-receptor mediated synaptic
currents recorded at a +40mV
membrane potential were elicited bylight activation of channelrhodopsinexpressing terminals of thalamocorticalafferents onto an upper layer cortical
GABAergic interneuron. moving the
470nm rectangular illumination to theright or the left of the cell activates
inputs of different strength innervating
different somatodendritic domains of
the cell. In black and red are theindividual and the average traces
respectively.
• Courtesy Dr. Theofanis Karayannis,
University of Zurich, Switzerland.
2018/07/11

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In Vivo Optogenetic Control of Zebrafish Larva Using
Polygon400 Illuminator• A) Light-evoked response of a headfixed larva expressing
channelrhodopsin (right).
Photostimulation site was indicated bya blue circle (470nm).
• B) A schematic diagram of the
Polygon400 patterned illumination inin vivo optogenetic mapping system.
• Courtesy Dr. Sachiko Tsuda, Saitama
University, Japan.
2018/07/11

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Uncaging RuBi Glutamate with the Polygon400 to Study
Neuronal Networks in the Cerebellar Cortex• An example of connectivity mapping thatallow to reproduce some results from inValera et al. (elife, 2016). 100um RuBi
glutamate was uncaged at various
locations in the granular layer with 20ms
pulses (blue bar), exciting notably
granule cells. We can then measure thespatial organization of the granule cells to
Purkinje cell (PC) connections byrecording PCs in whole cell patch clamp.
Granule cells triggers both monosynaptic
excitatory current onto PCS (left map,
measured a -60mW), but also disynaptic
inhibitory currents via molecular layerinterneurons (right map, measured at 0mW). Average evoked responses at one
location (dotted blue square) are shownat the bottom of the figure. Data storage,measurements, and map representations
can be made online, using a homemade
software in python.
• Courtesy, Dr. Antoine Valera & Dr.
Angus Silver, University College London,
UK.

2018/07/11

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Optogenetic Activation of Channelrhodopsin in Transfected
Hippocampal Neurons Using Mightex’s Polygon400• A) Patch-clamp recording of the current
generated by the channelrhodopsin when
activated with the blue LED light from the
Polygon400 illuminator as indicated by theblue bar.
• B) Activation of an action potential (upper
trace) and the corresponding current undervoltage-clamp conditions (lower trace). The
action potential could be evoked by a 0.5ms
stimulation of the blue LED light from the
Polygon400 illuminator at 60% intensity.
• Courtesy, Dr. Hans van Hooft, University of
Amsterdam, Netherland.
2018/07/11

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ing Polygon400 to Stimulate Hippocampal Slices Acutely Preparedfrom Mice Transgenically Expressing ChR2 in the Dentate Gyrus• The first figure a repetitive stimulation
with a larger circular pattern which
elicited increasing responses until anaction potential is generated. The
second figure is increasing theintensity of stimulation from 30% to100% and keeping the size of thepattern the same. Here we’re driving
the cell at 10Hz at 100% and one cansee that the stimulation is sufficient todrive doublets of action potentials
during each bout of depolorization.
• Courtesy, Dr. Geoffrey G. Murphy,
University of Michigan, USA
2018/07/11

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Local Photostimulation of Channelrhodopsin-2
Using Polygon400 Illuminator• A) Acute brain slice from a YFPchannelrhodopsin-2 (ChR-2) mouse
depicting its expression in cortical L5
pyramidal neurons. B) L5 pyramidal neuron
from the somatosensory cortex filled with
Alexa 594 to allow visualization of neuronalcompartments without stimulating ChR-2.
Blue dots indicate on the illuminated areas(Blue LED – 470 nm) along the apicaldendrite. Expansion of the marked areas
depicting the delicate dendrites that were
stimulated. C) Electrophysiological (patch
clamp) current recordings from the soma,
corresponding to local photostimulation of
ChR-2 by blue light. The numbers in thebottom of the trace corresponds to thestimulated dot numbers as indicated in B.
• Courtesy, Dr. Yossi Buskila, University ofWestern Sydney, Australia.

2018/07/11

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Purkinje Cell Firing Properties Unveiled by Optogenetic Activation of
the Cerebellar Granular Layer Using Variable Light Patterns with
Mightex Polygon400• Purkinje cell (PC) firing is monitored,
while various light stimulation
patterns are delivered to the
granular layer (gl) and/or molecularlayer (ml) of acute mouse
cerebellar slices. The mice
cerebellum was injected with AAVs
carrying the ChR2 construct. The
figure shows the firing frequency
increase caused in a PC unit (scalebar 500ms) by optogenetic
activation of a granular layer ROI(blue rectangle).
• Courtesy, Dr. Lisa Mapelli & Dr.
Simona Tritto, University of Pavia,
Italy.
2018/07/11

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Polygon400 - 文献 2018
• Che, A., Babij, R., Iannone, A.F., Fetcho, R.N., Ferrer, M., Liston, C., Fishell, G., & De
Marco Garcia, N.V. “Layer I Interneurons Sharpen Sensory Maps during Neonatal
Development”. Neuron, (2018).
• Gomati, S.V., Schafer, C.B., Eelkman Rooda, O.H.J., Nigg, A.L., De Zeeuw, C.I., & Hoebeek,
F.E. (2018). “Differentiating Cerebellar Impact on Thalamic Nuclei”. Cell Reports, 23(9),2690-2704, (2018)• Dine, E., Gil, A.A., Uribe, G., Brangwyne C.P., & Toettcher J.E. “Protein Phase Seperation
Provides Long-Term Memory Transient Spatial Stimuli”. Cell Systems, (2018).
• Oboti, L., Russo, E., Tran, T., Durstewitz, D., & Corbin, J.G. “Amygdala Corticofugal Input
Shapes Mitral Cell Responses in Accessory Olfactory Bulb”. eNeuro, (2018).
• van Haren, J., Charafeddine, R.A., Ettinger, A., Wang, H., & Wittmann, T. “Local Control
of Intracellular Microtubule Dynamics by EB1 Photodissociation”. Nature Cell Biology, 20,
252-261 (2018).
• Butler, J.L, Hay, Y.A., & Paulsen O. “Comparison of Three Gamma Oscillations in the
Mouse Entorhinal-Hippocampal System”. European Journal of Neuroscience, (2018).

2018/07/11

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Polygon400 - 文献 2017
• Andrasi, T., Verses, J.M., Rovira-Esteban, L., Kozma, R., Vikor, A., Gregori, E., & Hajos, N. “Differential
excitatory control of 2 parallel basket cell networks in amygdala microcircuits”. PLoS Biology, 15(5) (2017).
• Shimizu, K. & Stopfer, M. “A Population of Projection Neurons that Inhibits the Lateral Horn but Excites the
Antennal Lobe through Chemical Synapses in Drosophila”. Frontiers in Neural Circuits, 3(11) (2017).
• Adrian, M., Nijenhuis, W., Hoogstraaten, R.I., Willems, J., & Kapitein, L.C. “A Phytochrome-Derived
Photoswitch for Intracellular Transport”. ACS Synthetic Biology, 1248–1256 (2017).
• McBride, M.K., Hendrikx, M., Liu, D.Q., Worrell, B.T., Broer, D.J., & Bowman, C.N. “Photoinduced Plasticity in
Cross-Linked Liquid Crystalline Networks”. Advanced Materials, 29(17) (2017).
• Malyshev, A.Y., Roshchin, M.V., Smirnova, G.R., Dolgikh, D.A., Balaban, P.M., & Ostrovsky, M.A. “Chloride
conducting light activated channel GtACR2 can produce both cessation of firing and generation of action
potentials in cortical neurons in response to light”. Neuroscience Letters, 640, 76-80 (2017).
• Johnson, H.E., Goyal, Y., Pannucci, N.L., Schupbach, T., Shvarstman, S.Y., & Toettcher, J.E. ” Thespatiotemporal limits of Erk signalling”. Developmental Cell, 40(2), 185-192 (2017).
• Duan, J.G., Fu, H., & Zhang, J.Y. “Activation of Parvalbumin-Positive Neurons in Both Retina and Primary
Visual Cortex Improves the Feature-Selectivity of Primary Visual Cortex Neurons”. Neuroscience Bulletin,
33(3), 255–263 (2017).
• Watanabe, M., Feola, I., Majumder, R., Jangsangthong, W., Teplenin, A.S., Ypey, D.L., Schalij, M.J.,
Zeppenfeld, K., Vries, A.A.F., & Pijnappels, D.A. “Optogenetic manipulation of anatomical re-entry by lightguided generation of a reversible local conduction block”. Cardiovascular Research, 113(3), 354–366(2017).

2018/07/11

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Polygon400 - 文献 2014-2016• Fiedler, C.I., Aisenbrey, E.A., Heveran, C.M., Ferguson, V.L., Bryant, S.J., & McLeod, R.R.
“Enhanced mechanical properties of photo-clickable thiol-ene PEG hydrogels throughrepeated photopolymerization of in-swollen macromer”. Soft Matter, 44 (2016).
• Butler, J.L., Mendonça, P.R. F., Robinson, H.P.C., & Paulsen, O. “Intrinsic Cornu Ammonis
Area 1 Theta-Nested Gamma Oscillations Induced by Optogenetic Theta Frequency
Stimulation”. Journal of Neuroscience, 36(15), 4155-4169 (2016).
• Konetski, D., Gong, T., & Bowman, C.N. “Photoinduced Vesicle Formation via the CopperCatalyzed Azide–Alkyne Cycloaddition Reaction”. Langmuir, 8195–8201 (2016).
• García, N.V.D.M., Priya, R., Tuncdemir, S.N., Fishell, G., & Karayannis, T. “Sensory inputs
control the integration of neurogliaform interneurons into cortical circuits”. Nature
Neuroscience, 18, 393–401 (2015).
• Avants, B.W., Murphy, D.B., Dapello, J.A., & Robinson, J.T. “NeuroPG: open source
software for optical pattern generation and data acquisition”. Frontiers in
Neuroengineering (2015).
• Peng, H.Y., Wang, C., Xi, W.X., Kowalski, B.A., Gong, T., Xie, X.L., Wang, W.T., Nair, D.P.,
McLeod, R.R., & Bowman, C.N. “Facile Image Patterning via Sequential Thiol–
Michael/Thiol–Yne Click Reactions”. Chemistry of Materials, 6819–6826 (2014).

2018/07/11

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