特集

再生医療関連技術

再生医療製品向け新規ウシ血小板溶解物「NeoSERA®」開発と医療応用
Development and clinical application of a new adult bovine-derived platelet lysate "NeoSERA"
for regenerative medicical products

山 原 研 一 Kenichi Yamahara (Associate Professor)
兵庫医科大学 先端医学研究所 医薬開発研究部門 准教授

Laboratory of Medical Innovation, Institute for Advanced Medical Sciences, Hyogo College of Medicine

浜 田 彰 子 Akiko Hamada (Researcher)

兵庫医科大学 先端医学研究所 医薬開発研究部門 研究員

Laboratory of Medical Innovation, Institute for Advanced Medical Sciences, Hyogo College of Medicine

藤 盛 好 啓 Yoshihiro Fujimori (Professor)

兵庫医科大学 先端医学研究所 医薬開発研究部門 教授

Laboratory of Medical Innovation, Institute for Advanced Medical Sciences, Hyogo College of Medicine

梅 沢 晃 Ko Umezawa (Division Manager)
株式会社ジャパン・バイオメディカル 事業部長
Japan Biomedical Co., Ltd.

須 藤 稔 太 Toshita Sudo (CEO)

株式会社ジャパン・バイオメディカル 代表取締役
Japan Biomedical Co., Ltd.

品質、GMP、日本薬局方、原材料管理

以下、BSE）の発生は、FBSの生産に影響を及ぼした。2001年の

01 はじめに

我が国でのBSE発生報告を契機に、医薬品等の安全性を確保するため、2003年から生物由来原料に対し、細菌やウイルス等の我々は、新しい再生医療向け原材料として、胎児ウシ血清安全性確保のための基準（「生物由来原料基準」（平成15年5月（Fetal Bovine Serum：以下、FBS）に代わる、安全性・安定性・20日厚生労働省告示第210号））が定められることとなった。同

品質を高め、独自開発した国産ウシ血小板溶解物「NeoSERAⓇ」

基準では、医薬品等向けの反すう動物に由来する原材料に関し、を開発している。同時に、NeoSERA を原材料とするヒト羊膜由地理的BSEリスク評価に基づき、原産国が規定された。この結来間葉系幹細胞（以下、羊膜MSC）の製剤化と急性GVHD（移植果、BSEが発症した我が国は利用可能な原産国ではなくなり、我片対宿主病）
およびクローン病に対する医師主導治験を開始したが国でも一部実施されていた細胞培養用途のウシ血清の製造は

Ⓡ

1,2)
。
（UMIN試験ID UMIN000029945、UMIN000029841）

本稿では、NeoSERAⓇ開発の経緯とその特徴、再生医療を中心とした医療応用の可能性を概説する。

途絶えることとなった3)。
その後、発生経路となる飼料の規制強化等によりBSEの発生は1992年をピークに大幅に減少し、2016年には年間2頭の発生まで減少しており（国際獣疫事務局 World Organisation for02 NeoSERA の開発経緯Ⓡ

12、
BSEリスクは世界的に大Animal Health：以下、OIE HPより4））幅に低下している。2013年5月OIEは日本や米国等を新たにBSEの「無視できるリスク国」に指定し、2014年の生物由来原料基準

FBSは、細胞培養技術を用いて製造されるワクチンなどの医の改定（平成26年9月26日厚生労働省告示第375号）
では、反す薬品及び再生医療等製品向けに、細胞培養用添加剤のスタン

う動物由来原料等の利用可能な原産国を、OIEの指定するBSEがダードとして汎用されている。
しかし、1980年代後半英国から始「無視できるリスク国」としたことで、現状国産のウシ血清が医薬まった牛海綿状脳症（Bovine spongiform encephalopathy：品や再生医療等製品の原材料として使用できる状況にある。

THE CHEMICAL TIMES
現在我が国で上市されている再生医療等製品のうち、ジェイ用いることを推奨している。特にMSCについては、
ヒト血小板溶ス、ジャック、テムセル、ハートシートといった多くの製品で、その解物同様、その増殖性は旺盛であり、5%程度の添加でFBSと同原材料としてFBSを使用している 。この理由は、FBSが細胞培等の増殖を認めることが多い。

5)

養用添加剤のスタンダードであることに加え、細胞培養コストが一方、NeoSERA Ⓡ使用の主な注意点として、以下が挙げられ無血清培地よりも低額であることも理由と考えられる。
しかしな

るが、詳細はhttps://www.japan-biomedical.jp/how-to-

がら、FBSは不特定多数の胎児ウシの血液抽出物であり、場合にuse-neoseraを参照してほしい。

よっては感染胎児由来のウシ血液の混入もあり得ることから、①①N eoSERA ®は解凍により沈殿物が析出することがあるが、BSE原因であるプリオン混入のリスク、②ロット差、③結果、細胞製品の品質には問題なく、気になるようであれば、遠心や増殖性が劣る、といった、①安全性、②安定性、③品質における問0.22µmフィルター操作で除去を行う。

題点が以前から指摘されている。また、胎児ウシからという、倫理②FBSからNeoSERAⓇへの変更は、3継代程度の馴化操作が必的に大きな問題のある手法により採取されていることもクロー要である。具体的には、FBSとNeoSERA®の混合比率を3継代ズアップされている6)。の間に75%：25%→50%：50%→25%：75%と段階的に変化

これらの背景を踏まえ、我々は国産の成牛の血液を加工するさせる方法を推奨している。馴化の際、細胞の増殖が速くなっことにより、FBSの欠点をすべて打ち消す、①安全、②安定、③高た場合であっても継代時の播種密度は大きく変更することな品質な、医薬品・再生医療等製品向け血清の開発を目指した。ヒく、細胞をよく観察し、適切な継代のタイミングを決めることントとなったのは、増殖因子を豊富に含む、ヒト血液由来の血小をおすすめしたい。

板溶解物である。ヒト血小板溶解物は、ヒト細胞、特にMSCの培養用添加剤としての使用が多数報告されている他7)、多くの製品が市販されている8)。そこで我々は、成牛から血小板を抽出し、血を開発し清化処理を施した国産ウシ血小板溶解物「NeoSERAⓇ」

04 NeoSERA の性能Ⓡ（特許第6212723号）、その製造販売を手がける株式会社ジャNeoSERA Ⓡ の主成分である血小板溶解物は、Platelet-

パン・バイオメディカルを立ち上げた（https://www.japan-derived growth factor（PDGF）、Transforming growthbiomedical.jp）。

factor β（TGF-β）、Insulin-like growth factor-1（IGF-1）、

NeoSERA の安全性は、ジャパン・バイオメディカルの専用

Epidermal growth factor（EGF）
等の増殖因子が豊富に含ま牛舎にて、獣医による定期的な健康確認を受け、管理されたれており9)、細胞培養用添加剤として相応しい。そこで、再生医療成牛から採取された血液を原料として製造することで、完全な分野で広く検討されているヒトMSCおよびワクチン製造に汎用トレーサビリティを実現している。また、アメリカ合衆国農務省

されている細胞株について、NeoSERAⓇの性能に関しFBSと比（United States Department of Agriculture：USDA）
規則較検討した。

Ⓡ9CFR§113.420および欧州医薬品庁（European MedicinesAgency：EMEA）規則EMEA/CVMP/743/00に従い、ウイ≪ヒトMSCにおけるNeoSERAⓇによる増殖性≫

ルス不活化を含む滅菌を目的に30kGy以上のγ線照射を実ヒト骨髄MSCおよびヒト羊膜MSCにおいて、NeoSERAⓇおよ施しており、生物由来原料基準の規程を満たす安全な細胞培びFBSをぞれぞれ10%添加したαMEMにて培養し、増殖曲線を養用血清である（平成29年4月17日 医薬品医療機器総合機構作成した。培養7日目の培養写真・増殖曲線を図１に示す。

（Pharmaceuticals and Medical Devices Agency ：以下、PMDA）
再生医療等製品材料適格性確認書取得 薬機審長発第0417002号）。

ヒト骨髄MSCおよびヒト羊膜MSCの培養写真(図1(A)(B))において、FBSおよびNeoSERAⓇで培養した細胞の形態に明確なまた、安定性は、単一プロトコルにて、少数の成牛からの繰り返差は認めなかった。増殖曲線（図1(C)(D)）の結果から、ヒト骨髄・し採血から得られた血小板溶解物をプールした上で分注製造す

羊膜MSCの培養において、NeoSERAⓇはFBSよりも高い増殖性ることにより、ロット間差を最小限にしている。品質に関しても、を有することが示されたことから、細胞製剤化におけるメリットで採血から分注まで閉鎖系（分注のみ安全キャビネットでの操作）ある、短時間で多くの細胞を得ることが期待される。

にて製造することで無菌性を担保し、常にエンドトキシンは検出感度以下であり、コンタミネーションによる品質低下は皆無とし≪ワクチン製造用細胞株におけるNeoSERAⓇによる増殖性≫細胞バンクより入手したアフリカミドリザル腎臓由来細胞株ている。

Vero細胞およびヒト胎児肺由来細胞株MRC-5細胞において、

03

NeoSERAⓇを用いた細胞培養Ⓡト）
およびFBSを細胞株のデータシートに基づ
NeoSERA（3ロッき推奨される基礎培地に添加し培養を行い、増殖曲線を作成した。培養４あるいは５日目の培養写真・増殖曲線を図2に示す。

NeoSERA の使用に関し、注意すべき点はFBSと大きな差はⓇ

なく、MEM等の基礎培地への添加剤（～10%）
として細胞培養に

VeroおよびMRC-5の培養写真（図2(A)(B)）
において、FBS
13

特集

再生医療関連技術

図１ NeoSERAⓇおよびFBS添加によるヒト骨髄・羊膜MSCにおける増殖性(A)ヒト骨髄MSC培養写真（NeoSERAⓇ、FBS：それぞれ40倍）(B)ヒト羊膜MSC培養写真（NeoSERAⓇ、FBS：それぞれ40倍）(C)ヒト骨髄MSC増殖曲線（片対数）(D)ヒト羊膜MSC増殖曲線（片対数）

図2 NeoSERAⓇおよびFBS添加によるVero・MRC-5における増殖性(A) Vero培養写真（NeoSERAⓇ 3ロット、FBS：それぞれ40倍）(B) MRC-5培養写真（NeoSERAⓇ 3ロット、FBS：それぞれ40倍）(C) Vero増殖曲線（片対数）(D) MRC-5増殖曲線（片対数）およびNeoSERA Ⓡで培養した細胞の形態に明確な差は認めなにおいて、羊膜MSCの静脈内投与が治療効果を示すことを見いかった。増殖曲線（図2(C)(D)）の結果から、3ロットのNeoSERAだしている13)。

ⓇとFBSとの間に増殖性の差を認めなかった。

我々は、これら急性GVHDおよびクローン病モデルにおける非臨床試験の結果を踏まえ、羊膜MSCの製剤化と急性GVHD・

05

NeoSERAⓇを原材料とした羊膜MSC製剤開発

羊膜MSCの大量培養技術開発に着手した。1つ目の課題として、羊膜MSCの単離法の確立が必要であった。羊膜は羊水側から

我々はこれまでの基礎的研究において、羊膜MSCが強力なみて、基底膜に裏打ちされる一層の上皮細胞と、その下にある。例えば、急性

細胞外基質層があり、細胞外基質には羊膜1gあたり100万個以移植片対宿主病（Graft versus host disease：以下、GVHD）

上のMSCが含まれる。そこで、羊膜から羊膜MSCのみを効率的モデルを用いた評価において、ヒト羊膜MSCの静脈内投与はに採取する方法として、基底膜を壊さない程度に細胞外基質の急性GVHDの病態を改善することを示し、その理由の１つに羊みを分解できる酵素の配合を決定し、知財化した（図３、特許第膜MSCが有する高いプロスタグランジンE2産生能が考えら

6512759号）。この酵素配合で羊膜を処理することにより、上皮れた 。また、その発症に免疫学的機序が関与する炎症性腸疾患

細胞＋基底膜は残る一方、MSCは酵素液に浮遊した状態となり、については、デキストラン硫酸ナトリウム投与によるモデル動物

メッシュにて簡単に上皮細胞とMSCを分離することが可能とな免疫・炎症抑制効果を有することを示してきた

10,11)

12)

14

クローン病に対する臨床試験実施をめざし、細胞調製施設でのTHE CHEMICAL TIMES

図3 羊膜MSCの分離

図4 NeoSERAⓇを原材料とした羊膜間葉系幹細胞の製剤化

り、FACSによるソーティングといった特別な操作なしに、遠心機

細胞増殖性に優れたNeoSERAⓇを用いることで、FBSと比較し、のみで簡単に羊膜MSCのみ純化することに成功した。

①ロットチェックが不要、②製造工程が短期化、③大量培養が可

2つ目の課題として、羊膜MSCの大量培養法の確立があった。

能となり、大量製造が容易な製法の確立につながった（図４）。

まず、PMDA薬事戦略相談（現RS戦略相談）にて羊膜MSCの治験製品化に向け、概要書内容、特に原材料に関する相談から始まった。当時は旧薬事法の時代であり、再生医療等製品に対する明確なルールが十分には整備されておらず、更に著者にとって初・クローン病に対する
06 羊膜MSC製剤の急性GVHD
第I/II相医師主導治験と大学発ベンチャーの創業めての経験ばかりで、手探りの状態であった。特に最も苦労した

このような流れの中で、試験名「同種造血幹細胞移植後に発症のは生物由来原料基準である。以前の同基準に関し、前述のごとしたステロイド抵抗性急性移植片対宿主病(急性GVHD)を対象

く、羊膜MSCの原材料であるウシ血清はBSEを考慮し原則オセとしたAM01(羊膜由来間葉系幹細胞)の第I/II相試験」
に関するアニア産に限られること、更に無菌性、特にウイルスに関する規治験実施計画を確定し、兵庫医科大学病院臨床研究審査委員会

程が明確でなく、どのような資料をそろえれば良いか分からず、の承認（承認番号217851号）を経て、2017年11月厚生労働大苦労した。結果的に、このときの努力・知識のお陰で、NeoSERAⓇ臣に治験届を提出した（UMIN試験ID：UMIN000029945）。まを開発することに成功し、これを原材料とする羊膜MSC製剤のた、同時に計画していたクローン病に対する治験「既存治療で効開発につながった。
とりわけ、製法確立において、ロット差が無く、果不十分の中等症の活動期クローン病患者を対象としたAM01
15

特集

再生医療関連技術（羊膜由来間葉系幹細胞）の第Ⅰ/Ⅱ相試験」
も同年9月に治験届引用文献を提出するに至った（UMIN試験ID：UMIN000029841）。

1) S. Otagiri S, S. Ohnishi S, A. Miura A, et alH. Hayashi, I. Kumagai, Y.
M. Ito, T. Katsurada, S. Nakamura, R. Okamoto, K. Yamahara, K. Y.
Cho, T. Isoe, N. Sato, N. Sakamoto.,   Evaluation of amnion-derived
mesenchymal stem cells for treatment-resistant moderate Crohn’sdisease: study protocol for a phase I/II, dual-centre, open-label,uncontrolled, dose-response trial. BMJ Open Gastroenterol 52018;5:,e000206 (2018).

治験の概要であるが、既存の治療に抵抗性の、造血幹細胞移植後の急性GVHD・クローン病患者に対しAM01の静脈内投与を行い、その安全性評価を主たる評価とし、有効性を副次評価することを目的とする。投与方法は、AM01を下記の投与量に従って、急性GVHDは0日目、7日目、14日目、21日目に、クローン病は0日目、7日目のみ点滴で静脈内投与する。
低用量群

1.0×10⁶ 個 /kg：0、7、（14、21）
日目

高用量群

4.0×10⁶ 個 /kg：0、7、（14、21）日目

用量は低用量群から開始し、少なくとも3例の低用量群での安全性に関し、独立した組織である効果安全性評価委員会にて確認された後に高用量群へ移行し、高用量群での安全性を確認することとしている。
羊膜MSC AM01を用いた急性GVHD・クローン病に対する医師主導治験であるが、他家MSCということもあり、治験継続には多額の資金が必要である。そこで、治験の円滑な実施、更には羊膜MSC AM01製剤の製造・研究開発サポートを目的としたベンチャー会社として2018年2月に株式会社シーテックスを立ちあげ、同年4月には兵庫医科大学初・発ベンチャーとしての認定を受けた（https://www.c-tex.jp）。今後、増資による資金を活用し、治験製品AM01の円滑な製造を目指すと共に、急性GVHD・クローン病以外の疾患への応用14)、再生医療等製品として早期の製造販売承認取得を進めていきたい。

07

NeoSERAⓇの今後細胞培養技術を用いて製造される医薬品・再生医療等製品において、NeoSERAⓇを原材料とすることで、我々の羊膜MSC製剤のように、製品の安全性の強化、培養期間の短縮による低コスト化を実現できるものと考えており、我が国だけでなく世界展開を視野に、積極的な販売展開を行っていきたいと考えている。
現在、NeoSERA のGMP製造化、更には豪州産の製造に取りⓇ組んでおり、近い将来、製品化される予定である。NeoSERAⓇをFBSの代替品として幅広い研究者・技術者に使用して頂き、我々にフィードバックを頂くことで、よりよい製品になるものと考えており、ご協力頂ければ幸いである。

2) K. Yamahara K, A. Hamada A, T. Soma T, R. Okamoto, M. Okada, S.
Yoshihara, K. Yoshihara, K. Ikegame, H. Tamaki, K. Kaida, T. Inoue, Y.
Ohsugi, H. Nishikawa, H. Hayashi, Y. M. Ito, H. Iijima, S. Ohnishi, D.
Hashimoto, T. Isoe, T. Teshima, H. Ogawa, N. Sato, Y. Fujimori, et al.
Safety and efficacy of amnion-derived mesenchymal stem cells (AM01)
in patients with steroid-refractory acute graft-versus-host disease after
allogeneic haematopoietic stem cell transplantation: a study protocol
for a phase I/II Japanese trial. BMJ Open 2019;9, :e026403 (2019).
3) 組合だより ,. 中標津農業協同組合・中標津町農業共済組合 . Volume 9,
1993:6 (1993).
4) World Organisation for Animal Health, BSE situation in the world andannual incidence rate,  https://www.oie.int/animal-health-in-the-world/
bse-situation-in-the-world-and-annual-incidence-rate/ ( 参 照 2020-131).
5) PMDA 医薬品医療機器総合機構 ,  承認情報 再生医療等製品 審査報告書・ 申 請 資 料 概 要 ,  https://www.pmda.go.jp/review-services/drugreviews/review-information/ctp/0002.html ( 参照 2020-1-31).
6) C. E. A. Jochems CE, J. B. F. van der Valk JB, F. R. Stafleu FR, V.
Baumans,   et al. The use of fetal bovine serum: ethical or scientificproblem? Altern. Lab Anim. 2002;30, :219-27 (2002).
7) E. Rubio-Azpeitia E, I. Andia I. Partnership between platelet-rich plasma
and mesenchymal stem cells: in vitro experience. Muscles Ligaments
Tendons J. 2014;4, :52-62 (2014).
8) T. Burnouf T, D. Strunk D, M. B. C. Koh MB, et al., K. Schallmoser,
Human platelet lysate: Replacing fetal bovine serum as a gold standard
for human cell propagation? Biomaterials 2016;76, :371-387 (2016).
9) C. Doucet C, I. Ernou I, Y. Zhang Y, et al., J.-R. Llense, L. Begot, X.
Holy, J.-J. Lataillade, Platelet lysates promote mesenchymal stem cell
expansion: a safety substitute for animal serum in cell-based therapy
applications. J. Cell. Physiol. 2005;205(2), :228-236 (2005).
10) S. Ishikane S, K. Yamahara K, M. Sada M, et al. K. Harada, M. Kodama,
H. Ishibashi-Ueda, K. Hayakawa, K. Mishima, K. Iwasaki, M. Fujiwara,
K. Kangawa, T. Ikeda, Allogeneic administration of fetal membranederived mesenchymal stem cells attenuates acute myocarditis in rats. J.
Mol. Cell. Cardiol. 2010;49(5), :753-761 (2010).
11) M. Ohshima M, K. Yamahara K, S. Ishikane S, et al., K. Harada, H.
Tsuda, K. Otani, A. Taguchi, M. Miyazato, S. Katsuragi, J. Yoshimatsu,
M. Kodama, K. Kangawa, T. Ikeda, Systemic transplantation of allogenic
fetal membrane-derived mesenchymal stem cells suppresses Th1 andTh17 T cell responses in experimental autoimmune myocarditis. J.
Mol. Cell. Cardiol. 2012;53(3), :4420-428 (2012).
12) K. Yamahara K, K. Harada K,, M. Ohshima M, et al. S. Ishikane, S.
Ohnishi, H. Tsuda, K. Otani, A. Taguchi, T. Soma, H. Ogawa, S. Katsuragi,J. Yoshimatsu, M. Harada-Shiba, K. Kangawa, T. Ikeda, Comparisonof angiogenic, cytoprotective, and immunosuppressive properties ofhuman amnion- and chorion-derived mesenchymal stem cells. PLoS
PLOS One ONE 2014;9, :e88319 (2014).
13) R. Onishi R, S. Ohnishi S, R. Higashi R, et al., M. Watari, K. Yamahara,
N. Okubo, K. Nakagawa, T. Katsurada, G. Suda, M. Natsuizaka, H.
Takeda, N. Sakamoto, Human Amnion-Derived Mesenchymal Stem Cell
Transplantation Ameliorates Dextran Sulfate Sodium-Induced SevereColitis in Rats. Cell Transplant. 2015;24,: 2601-2614 (2015).
14) Y. Imai Y, K. Yamahara K, A. Hamada A, et al., Y. Fujimori, K. Yamanishi,
Human amnion-derived mesenchymal stem cells ameliorate imiquimodinduced psoriasiform dermatitis in mice. J. Dermatol. 2019;46(3),:276-278 (2019).

16