海洋微細藻類の光合成・物質生産と地球環境
Photosynthetic biomass production by marine microalgae and its impact on global environment
筑波大学

生命環境系

白岩

善博

Professor Yoshihiro Shiraiwa, PhD

Faculty of Life and Environmental Sciences, University of Tsukuba

細胞殻（ココリス）から成る石灰岩として著名である（図

1. はじめに1）。また、英国・東方海域の北海には、北海油田で知ら

地球誕生直後は大気中に存在しなかった分子状酸れるように原油や天然ガスの埋蔵地域と石灰岩床の分素（O2）は、水（H2O）から還元力を獲得する光合成生

布地域が広がっている 1）（図 2）。

物の出現によってその量を増大させ始め、その大気中「藻類」とは、酸素発生型光合成機能を有する維管の濃度は 21% にまで上昇してきた。それは、太陽光エネ

束植物とコケ植物以外の生物群を総称する。ほとんど

ルギーを利用して水（H2O）
を分解し、その結果得られは水中生活をするが、気生藻類のように木や壁などのた還元物質の作用により二酸化炭素（CO2）を還元し有表面で生活するものもある。また、進化の過程で光合成機物を合成する生命体の出現によるものである。一方、機能を消失した生物群もあり、それらも藻類に入れる場

地球大気の大部分を占めていた CO2 は減少を続け、氷合が多い。生活環境は淡水性、海水性、高塩濃度湖

期には 180 ppm、間氷期には 280 ppmにまで達した。し沼性、気生性など多岐に渡る。

かし、産業革命後の化石燃料の消費に伴うCO2 放出に海洋微細藻類は光合成作用によりCO2 を固定し物

より、その濃度は急速に上昇し始め、2015 年 3 月にはつ質生産を担い、それを代謝過程により様々な物質に変

いに 400 ppmを記録した。

換し細胞増殖に寄与すると共に、増殖した細胞体自身

地球環境の変遷は地殻変動などの地球科学的要因に加え、光合成生物をはじめとする生命活動の結果によって大きく影響されてきた。そして、それらの変化が光合成生物自身やその他の生物にも大きな影響をもたらし、生 物 進 化による様々な生 物の誕 生にも関わってきた。例えば、海洋植物プランクトンの一種のハプト藻類
円石藻は細胞殻として方解石型炭酸カルシウム結晶から成る構造体（円石、ココリス）を有する。円石藻は約 2億年前に誕生し、中生代白亜紀に大量に繁茂したことで知られる。その大増殖の結果、円石藻が大量に海底へと沈降し、そして蓄積した。そこで細胞殻は石灰岩を形成し、細胞の有機質部分は地球化学的作用により
原油・天然ガスの基となる有機物を大量に生産し、大気中の CO2を減少させたことが明らかにされている。英
仏間海峡に面する英国・ドーバーの白い崖は円石藻の2THE CHEMICAL TIMES

2015  No.4
（通巻 238 号）

図 1（上左）化石になった白亜紀の円石藻。イギリスドーバー海峡のホワイトクリ
フを形成する白亜紀の円石藻化石の走査電子顕微鏡
（SEM）
写真。円石
藻の膨大な増殖が白亜紀にあったことを示すものである。
（上右）
現世のイギリス周辺海域で単離された生きた円石藻 E. huxleyi の走査電子顕微鏡像（下）
ドーバー海峡の白い崖（インターネットより取得 Fanny. "White Cliffs
of Dover" flickr. https://www.flickr.com/photos/fanny/555925/,（accessed 2015-08-26）.）

海洋微細藻類の光合成・物質生産と地球環境

は動物プランクトンの餌となるなど、海洋生態系を支える

本稿では、海洋微細藻類の光合成、代謝、物質生産

重要な一次生産者としての役割を果たしている。さらについて紹介すると共に、海洋微細藻類が担ってきた海に、代謝産物の一部は生細胞から分泌されると共に、

洋・地球環境とのかかわりを俯瞰し、それらの機能を人捕食などで死骸となった場合にも海水中に遊離し、バク類がどのように未来に役立てて行くべきかを考察する。

テリアなどの増殖を支える。それと同時に、一部の揮発性化合物は大気中へと放出される。当然、光合成生成物としての 酸 素 が 放 出される他、ジメチルスルフィド

2. 海洋微細藻類のバイオマス（DMS）等 の 揮 発 性 化 合 物も大 気 へと放 出される。

海洋光合成は現在の地球上の一次生産の約 50%

DMSは硫黄化合物であり、雲核となり、大気上空におを占めるとされている 2）。中でも、ハプト藻類（真核生物）

ける雲の形成に寄与することが明らかにされている。しは、円石形成種群（円石藻）および非円石形成種群をたがって、海洋微細藻類の増殖は当該海域の天候に合わせて海洋における主要な光合成生物群の一つでも影響を与えることが明らかにされている（図 3）。

あり、他に優占種として知られるシアノバクテリア（原核生物・ラン藻類）や珪藻類（真核生物）の 2 倍の光合成生産量を占めていると見積もられている3）（図4）。Brown（1995）によれ ば、Global Composites of Costal Zone
Color Scanner（CZCS）画 像 解 析において、円 石 藻ブ
ルームは乳白色もしくはトルコブルー色として観察され、その成果に基づき、高緯度海域（40-60°）における71％で円石藻のブルームが見られ、その面積は 1400 万 km2に達すると報告されている 4）。さらに、詳細な解析から、年間 40-130 万トンの炭酸カルシウムの生産と1 万トンの
DMS が生産されていると見積もられている。

図 2 1）北海における原油および天然ガスの埋蔵地域と石灰岩床の分布地域（Gibson, 2014を一部改変）

図 3 海洋微細藻類円石藻の光合成及び石灰化反応による炭素固定・物質生
産機構と海洋・大気環境との関わりとそのインパクト

図 4 西暦 2000 年における海洋微細藻類のクロロフィル a および補助色素に基づくバイオマス生産量の見積もり。 A: ハプト藻、B: 珪藻、C: シアノバクテ
リア。3）

THE CHEMICAL TIMES

2015  No.4
（通巻 238 号）

3

北大西洋における円石藻 E. huxleyiの大増殖（ブルー

成功し、海洋における光合成生物（植物プランクトン）のム）
において、細胞数は 850 万個 /L（8.5 x 106/L）で海域

分布やその変動が明らかにされ、その膨大なバイオマ

はトルコブルーに変色した。細胞増殖は深度 60 mまで

ス生産量が見積もられてきた。現在、海洋における光合及び、1 m あたり40 g の炭酸カルシウムが生産された。

成生物の動態の指標となるそのデータは海洋開発研

ブルーム海域は 7,200 km に及んだことから、7.2 万トン

究機構（JAMSTEC）とアメリカ航空宇宙局（NASA）によの方解石型炭酸カルシウムが生産されたと見積もられてる解析を経て、SeaWiFS 衛星画像としてほぼリアルタイ

いる。更に、高緯度海域において、円石藻 Coccolithus

ムで公開されている（図 5）。

2

2

pelagicusのブルームにおいて、年間 0.7-33.1 g/m の炭酸

何故、円石藻は世界中の海で繁茂し、その広い分布

カルシウムの生産があったと見積もられており、範囲をを保つことができるのか？ 何故、多様な生息環境に適

7,200 km2と仮定すると、5–238 キロトンの炭酸カルシウム

応し、その高い生息数を保ち続けることができるのか？

生産があったと見積もられる 。過去の円石藻ブルーム

なぜ、多様な変異を持つ株（種類）が存在するのか？そにおいて、数週間の増殖で約 8メガトン（一日換算で約

れらは大きな謎となっていた（図 6）。その解明のために100キロトン）の炭酸カルシウムが形成され、沈降したとの

円石藻 E. huxleyi CCMP1517 株の核ゲノムの全塩基配見積もりもあり、その二酸化炭素固定化能と隔離のポテ列の解読・解析が行われた。その結果、海洋性植物プ

ンシャルは現世の海洋においても膨大である。

ランクトンとしては最もゲノムサイズは大きく約 168 Mbp

25）円石藻が生産するジメチルスルヒド（DMS）は円石藻で、33,431 個の遺伝子をコードすることが明らかとなっ類の浸透圧調節機能を担う硫黄化合物であるジメチル

た。さらに、13 の地理的系統についてゲノム解析結果

スルヒドプロピオネートの分解産物として生産され、ガスを比較した結果、光合成、栄養摂取、殻形成などに関体として海 洋 から大 気 中に放 出される物 質 である。

与する塩基配列に系統間で大きな変異が見出された。

DMSは大気上空で二酸化硫黄や硫酸イオンに酸化さそれらの変異は 33,431 個の遺伝子を含む全ゲノムのうれ エ アロゾ ルを 形 成し、雲 核（Cloud Condensation

ちの「パンゲノム」領 域（約 18,000 個の遺 伝 子）であっ

Nuclei, CCN）となり雲の形成に寄与することが知られてた。パンゲノムの存在が確認されたのは、真核微生物

いる（CLAW 仮説 ）。

では初めてである 8）。

6）

海洋植物プランクトン群集の全世界的な調査に基づく生物多様性研究から、バイオマス量が中間レベルの時にその多様性は最大となり、大発生期に最小となることが 示されている 7）。1997 年には衛 星に搭 載された
SeaWiFS 海色センサーによるクロロフィル a の画像化が

図 6 世界の海で見られる円石藻 E. huxleyi の多様性
（タイプ）を示す走査電子
顕微鏡像 8）

3. 海洋微細藻類の光合成
一次共生と二次共生：
酸素発生型光合成を最初に獲得した生物は原核生
図 5 2015 年 7月29日に観測されたバレンツ海における円石藻類の大増殖（ブルーム）。NASA‘s Ocean Color Web（http://oceancolor.gsfc.nasa.
gov/cms/）の Aqua-MODIS 画像をGoogle Earth 上に配置。

4

THE CHEMICAL TIMES

2015  No.4
（通巻 238 号）

物のシアノバクテリア（ラン藻類）で、核膜やオルガネラ
包膜を持たない生物群である。そして、光合成機能を海洋微細藻類の光合成・物質生産と地球環境有しない真核細胞がシアノバクテリアを細胞内に取り込

多様性が大きい。しかし、それらの補助色素からエネル

む形で、光合成機能を有する細胞器官（葉緑体）と分ギーを受け取り最終的に光エネルギーを集約する機能

子状酸素を利用して有機物を酸化してエネルギーを取を持つ光合成反応中心を構成する色素はクロロフィルa

り出す細胞器官（ミトコンドリア）を獲得したのが一次植物に限定されている点と、複数の種類があるクロロフィル（一次共生生物）である。それらは、緑藻類・緑色植物、のポルフィリン環に配位する元素はマグネシウムである

灰色植物、紅藻類・紅色植物である。そして、それら一点は共通している。ただし、パラオ島のクラゲに共生し次植物を更に真核細胞が取り込む形で進化した生物ているアカリオクロリス（シアノバクテリア）ではクロロフィ

群が二次植物（二次共生生物）である。そして、一次

ル d が主要光合成色素として機能することが例外的に共生を経て様々な真核生物が光合成機能を獲得する発見されている 9）。

こととなり、さらに二次共生によってその多様性を拡大することとなった 。
9）

藻類の光合成による二酸化炭素固定と有機物合成
はカルビン・ベンソン回路（C 3 回路、還元的ペントースリン

細胞内共生が成立する過程では、共生体（葉緑体）

酸回路）により行われる。それはリブロース-1,5-ビスリンと宿主細胞のゲノムが統合されると共に、細胞器官（オ酸カルボキシラーゼ/オキシゲナーゼ（Rubisco）
によるCO2ルガネラ）がその機能を十分に発揮するためには、オルガ固定反応を起点とする代謝回路であり、CO2 固定段階

ネラ間の代謝産物輸送システムの確立など、ダイナミック→還元段階→ C5 化合物再生段階の 3 段階から成る。

な変化が不可欠であった。特に、二度の共生を経て誕生

最初の CO2 固定反応生成化合物は 3- ホスホグリセリン

した二次植物では、ゲノムおよび代謝経路の改変の度酸（3-PGA）である。それは更に光化学系で生産された

合いも大きく、多様な藻類の比較ゲノム解析や生化学的高エネルギー物質であるアデノシン三リン酸（ATP）と還解析によりその細胞機能が解明されなければならない。

元物質ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド（NADPH）

一次植物の葉緑体には 2 枚の包膜があり、その外膜を利用したリン酸化反応と還元反応を経て、グリセロアにはポーリン様タンパク質が存在し代謝産物の透過はルデヒドリン酸（GAP）およびジヒドロキシアセトンリン酸

自由である。しかし、内膜では代謝産物の輸送には輸（DHAP）（ 合わせてトリオースリン酸（Triose-P）と呼ぶ）に送体が必要であり、その輸送体が細胞全体の代謝を転換される。そして、再生段階で生成されるC 6 代謝中制御する役割を果たしている。一方、二次植物の葉緑間体（フルクトースジリン酸、フルクトースリン酸）を経て、体は一次植物の葉緑体が有するものと同じ内膜と外膜

C 5 化合物が再生されると共に、新たに固定された CO 2に加え、そのさらに外側に、その進化の過程の違いによに相当する炭素量の分がグルコースポリマー合成系にり3 枚目、4 枚目の包膜を持つこととなり、最も外側には

導かれ、その結果、光合成の最終産物として葉緑体に核膜と連結した膜を有している。しかし、現状では二次貯蔵性多糖（デンプンなど）
として蓄積される。カルビン・

植物の葉緑体における代謝産物輸送体の生化学的解

ベンソン回路は各種の光合成生物間で非常に共通性

析は不十分であり、更なる研究が必要である。

の高い代謝系であり、その基本的な機構は一次植物や二次植物など、種や分類群による相違は見られない。

藻類の光合成と代謝系：

一方、カルビン・ベンソン回路の代謝速度や Rubisco

藻類の光合成系の多様性は非常に大きい。まずはの性質、CO2 固定効率、O2 による拮抗阻害の程度など

多様な光環境に生育する中で獲得した形質やその環は分類群により大きく異なっており、進化の過程において境への適応のために進化過程で藻類が獲得したものと環境変動を反映する特徴を有している。さらに、炭素貯して光合成色素の多様性が挙げられる。藻類の「色」

蔵体に関して、陸上植物や緑藻類を含む緑色植物のはその分 類 上の重 要な形 質として長 年 利 用され、藍光合成炭素貯蔵体はデンプン（α-1,4- 結合による主鎖藻、灰色藻、緑藻、褐藻、紅藻、黄金色藻、黄緑藻などにα-1,6- 結合による分枝を有するグルコースポリマー）の分類群が設定されてきた。光合成で光エネルギーをであるが、藻類のそれはその分類群によって大きな多様

化学エネルギーに変換する光化学系において、最初に性がある。特に、パラミロンやクリソラミナラン（β-1,3- 結

光を吸収するアンテナ色素系（光合成補助色素）には合による主鎖にβ-1,6- 結合による分枝を有するグルコー

THE CHEMICAL TIMES

2015  No.4
（通巻 238 号）

5

スポリマー）は水溶性であるなど、貯蔵物質としての性てクロロフィル （c クロロフィル a と異なりフィトール鎖がな

質が大きく異なり、それらを有する生物群の多糖合成代い）を持つ点など共 通 点が多い。珪 藻やハプト藻にも謝系がそれぞれの生物の性質にも大きく影響している。

TPT 相同遺伝子が存在している。しかし、4 枚すべての包膜に TPT が存在するか否かは確認されておらず、ま一次植物と二次植物の葉緑体内代謝系の特徴：
一次植物の葉緑体包膜の内膜には、トリオースリン酸

た TPTの分子特性（基質特異性など）は実験的に確認されていない 10, 11）。

と無機リン酸（Pi）の対向輸送を行うトリオースリン酸 /リ

一方、一次植物が持つ PPTの相同遺伝子は、珪藻

ン酸輸送体（TPT）が存在し、トリオースリン酸の一部はやハプト藻のゲノムには存在せず、PPTによる細胞質か葉緑体から細胞質へ運び出される（図 7）。細胞質に運ら葉緑体への PEP の輸送は行われていない可能性がび出されたトリオースリン酸は、細胞質でホスホエノール高い。一方、3-PGAを PEPに変換するために必要な 2ピルビン酸（PEP）に変換される。そして細胞質で作られ種の酵素（3−ホスホグリセリン酸ムターゼとエノラーゼ）

たPEPの一部は、PEP/リン酸輸送体（PPT）
を介して、再が葉緑体に局在すると予測されている。そのため、葉び葉緑体内に取り込まれる（図 7）。葉緑体内では、PEP

緑体内での生合成に必要な PEP は、細胞質から取りおよびピルビン酸から、イソプレノイド、芳香族アミノ酸、込むのではなく、葉緑体内で C 3 回路から直接合成され脂肪酸など、様々な物質が合成される。この代謝モデる（図 8）。また、ハプト藻や珪藻では、葉緑体局在と予ルは、陸上植物で確立されたものだが、緑藻や紅藻な測されるピルビン酸カルボキシラーゼ（PYC）という酵素をどの一次植物にも当てはまると考えられている。なお、一もち、葉緑体内で C 3 化合物（ピルビン酸 PYR）
を C4 化次植物である緑藻や紅藻では、葉緑体内にエノラーゼ

合物（オキサロ酢酸 OAA）に変換することが可能であという酵素が存在しないため、葉緑体内で直接 3-PGAる。すなわち、C 3 回路で合成された C 3 化合物を C 4 化

からPEPを作ることはできない

合物に変換する経路（図 8）は、一次植物には存在せ。

10,11）

ず、一部の二次植物に特異的な代謝経路であると考えられる 10, 11）。二次植物では、教科書で標準とされている
陸上植物の代謝モデルが当てはまらない例が多数あり、二次植物が多大なバイオマスを占める海洋の一次生産
性や物質循環を解析する上で、今後、体系的な解明が必要である。

図 7 緑藻・緑色植物（一次植物）の光合成初期代謝系 10）,11）。 紅藻（一次植物）
はアミロペクチン様デンプン（紅藻デンプン）を合成しそれを細胞質に蓄積する点で異なるが、PEPを葉緑体独自で合成できない点は共通している。
それは、3-PGA ムターゼとエノラーゼを持たないことに起因している。
3-PGA, 3-phosphoglycerate; Triose-P, triose phosphate; F6P,
fructose 6-phosphate; PEP, phosphoenolpyruvate; PYR, pyruvate;
Pi, inorganic phosphate; TPT, triose phosphate/Pi translocator;
PPT, PEP/Pi translocator.

二次植物の葉緑体の起源は多様であり、全ての二次植物に当てはまる代謝モデルは存在しないため、ここでは紅藻の二次共生により葉緑体を獲得した珪藻（不等毛植物）とハプト藻（ハプト植物）について、ゲノム情報から推測される代謝モデルについて概説する。それ
らの葉緑体は、一次植物の葉緑体にさらに 2 枚の包膜が加わり、計 4 枚の包膜に包まれ、光合成補助色素とし

6

THE CHEMICAL TIMES

2015  No.4
（通巻 238 号）

図 8 円石藻と珪藻（二次植物）の光合成初期代謝系 10）,11）。 本生物群ではPPT の存在は見出されていないが、TPT 様輸送体の存在がゲノム上で確認されている（局在は不明）。尚、珪藻T. pseudonana のゲノムには葉緑体型エノラーゼは存在せず、二次植物内での多様性が存在する。3-PGA,
3-phosphoglycerate; Triose-P, triose phosphate; F6P, fructose
6-phosphate; PEP, phosphoenolpyruvate; PYR, pyruvate; Pi,inorganic phosphate; TPT, triose phosphate/Pi translocator; PPT,PEP/Pi translocator; OAA, oxaloacetate; PGM, 3-PGA mutase;
ENO, enolase; PYC, pyruvate carboxylase.

海洋微細藻類の光合成・物質生産と地球環境

4. 海洋微細藻類・円石藻の物質生産の特徴
現在世界のエネルギー源として経済・産業基盤を支える原油は化 石燃料である。地 球科 学 的 知 見によれ

飽和ケトン
（アルケノン）を乾燥重量の 20-30% 程度有する。そのため、熱分解によって生成したこれらの化合物は、長鎖のアルケノンの分解産物であると考えられ
る 14, 15）。

ば、有機物起源の原油および天然ガスの形成は、約 6アルケノンは、現在、化石や現世種を含め海洋種 4割程度が中生代白亜紀（1.4 億年〜6,500 万年前）にお種および湖沼種 1 種のハプト藻（円石藻も含まれる2 次

ける植物プランクトンが生産した有機物が起源と考えら共生によって生じた生物群）のみで知られる種特異性れている。中でも、中東・中生代の石油は、石灰質ナノの高い脂質化合物である。アルケノン分子の特徴は、プランクトン（円石藻など）が生産者の主体であったとす

炭素数 37〜40 の長い炭素鎖、トランス型の炭素二重る知見があり、現在も海洋バイオマス生産に寄与してい結合（2〜4 個）および末端にケト基を有することである。

る微細藻類種の祖先型が原油生成に寄与したと考えその分子の特徴は、炭素数 16〜22 の炭素鎖、シス型られている。石灰岩は生物起源と化学的沈殿によっての炭素二重結合（0〜3）および末端にカルボキシル基を形成されたとされているが、イギリスのドーバー海峡の白有する脂肪酸と比較すると明らかである（図 9）。この化

い崖（white cliff）は円石藻の大量堆積で形成されたも合物がハプト藻自身にとってどのような役割を担っているので、円石藻の細胞殻（ココリス）が走査電子顕微鏡でか、どのような合成経路を経て合成されるのかは未解

確認できる（図 1）。

明であり、今後の研究の進展が期待されている。トリグ

筆者らは、ハプト藻類円石藻株 E. huxleyiを対象に、リセリド、糖脂質、リン脂質などの微細藻類の脂質は、光合成 CO2 固定機構を解析した。その結果、「動物型」

細胞内でオイルドロップや膜脂質として存在する。円石酵 素として知られてきたピルビン酸カルボキシラーゼ

藻は他の微細藻類が貯蔵脂質として合成するトリグリ（PYC）が、その葉緑体で Rubiscoに続く2 つ目の CO 2 固

セリドを有しないため、細胞内のオイルドロップレットはア定酵素として機能していることを発見したルケノンであると推測された。

。 C-トレー12） 14サを用いた炭素代謝解析の結果、PYC が光合成器官
においてアミノ酸合成（窒素化合物）と脂質・糖合成（炭水化物）への炭素の流れを調整する重要な機能がある
ことも明らかになっている（図 8）。さらに、生理学的な解析において、円石藻 E. huxleyi が、他の藻類とは異なり、多糖（β-グルカン）ではなく、アルケノン・アルケンなどの脂質を貯蔵物質とすることを明らかにした。光合成による物質生産の律速段階は CO 2 吸収・固定段階であることやアルケノン・アルケン脂質体が主要炭素貯蔵体であり、光合成で固定された炭素の 20％を占めることも明ら
かにした

。

13）

図 9 脂肪酸
（リノール酸）と長鎖不飽和ケトン（C37：2 アルケノン）の分子構造

そのオイルドロップの組成を解明するため、アルケノン
合成ハプト藻類株 Tisochrysis lutea 細胞からアルケノン

筆者らは、円石藻 E. huxleyiを実験室で培養し、円蓄積細胞小器官（脂質体）
を単離・精製する技術開発

石藻が原油の起源生物となり得るかを確認した。円石が行われた。円石藻 E. huxleyiからのオイルボディ単離

藻の乾燥粉末をガラス管に封入して無酸素状態で熱は困難であり、ココリスを有しないアルケノン合成株が用

分解（pyrolysis）を行った結果、300℃で液体炭化水素いられた。その結果、まずその脂質体の組成が、アルケが多く得られ、それらの成分には炭素数 31（ C31）以下

ノン（74%）、アルケン（1%）、ステロールを含むその他のの種々の炭化水素分子が含まれることを見出した。更脂質（25%）から成ることが明らかにされ、「アルケノンボに、400〜500℃では、メタンやエタンを主とするガス状

ディ」と命名された。さらに、プロテオミクス解析から、主の炭化水素分子が生成されることを確認した。円石藻

なアルケノンボディタンパク質はV-ATPaseであることが明は、中性脂質成分として炭素数 37を主とする長鎖不らかとなった 16）（図 10）。

THE CHEMICAL TIMES

2015  No.4
（通巻 238 号）

7

造が未確定な化合物について、その構造決定を行った。
その結果、C 29 アルケンを主要産物とする非常に珍しいハプト藻類円石藻 E. huxleyiとGephyrocapsa oceanicaの新規の株が見出された 18）。
5. 原油起源生物・円石藻による再生可能エネルギー生産への技術開発
中生代原油の起源生物とされる海洋ハプト藻類で乾燥重量の 20-30%を占める脂質アルケノン（超長鎖不飽
和ケトン）
およびアルケンを活用し、海水利用の Drop-inFuelタイプのバイオ燃料や原油代替原料生産を人工的に強化するための基盤技術の開発を目的として研究を精力的に進めてきた。アルケノンは陸上植物や多くの藻図 10（左）円石藻E. huxleyi の光合成産物の合成速度の定量的比較。
（右上）
円石藻E. huxleyi の SEM 画像、オイルドロップ（オイル体）の蛍光顕微鏡像および細胞塊から染み出るオイル成分。
（右下）
アルケノン生産ハプト
藻類株 T. lutea のトランスクリプトーム解析とメタボローム解析から得られたデータに基づくアルケノンボディの模式図

異なり、直鎖中性脂質分子である点でユニークである。
また、藻類エネルギー生産においては、膨大な量の培
養液（水資源）を必要とするため、今後世界的に淡水のアルケノン合成生物による脂質の合成能を増強する

供給が不足することが懸念される中、海水利用のバイオ

ためには、その合成・調節・不飽和化に関わる酵素を

マスエネルギー生産は開発が期待される技術分野の一同定するなど、その合成機構を解明する必要がある。

つである。円石藻は海洋性の藻類であることから淡水を筆者らは、まず、ハプト藻類が高度不飽和脂肪酸 18:5

必要とせず、近い将来予測される水不足問題を回避で（炭素数 18 で 5 個の不飽和結合を有する）
を合成する

きるに点で期待に応えるポテンシャルを持っている。筆者ことに注目した。次に、円石藻 E. huxleyiの酵素遺伝子

らは、JST/CRESTプロジェクト：研究領域「藻類・水圏微をシアノバクテリアにおいて異種発現させる実験系を確

生物の機能解明と制御によるバイオエネルギー創成の立した。その上で、E. huxleyiのゲノム情報 から18：5

ための 基 盤 技 術 の 創 出」の 研 究 代 表 者（研 究 期 間

脂肪酸合成に関与すると推定した 4 つの不飽和化酵

2010 〜 2015 年度）として、海洋微細藻類のメタボローム

素遺伝子を異種発現させ、解析した。その結果、その解析システムを作り上げ、全く未解析であったアルケノン

内の一 種 類の酵 素の同定に成 功した。興 味あること

生産生物の脂質合成機構の解明に取り組んできた。

8）に、当該酵素は、他の生物におけるΔ15 不飽和化酵素

また、原油生成の起源生物の代表種とされるハプト藻とは系統学的に全く異なるクレードに属したことから、新類円石藻 E. huxleyiの全ゲノム解読やアルケノン・アルケ

規なΔ15 不飽和化酵素であることを明らかにした。本酵

ン生産生物を網羅的にスクリーニングして最適生物の同素は、ハプト藻類のドコサヘキサエン酸（DHA, 22:6）の定に成功した。これらの成果を通して、海洋ハプト藻類

合成にもかかわる重要な酵素であると考えられるが、藻類バイオマスエネルギー資源として高いポテンシャ。

17）

アルケノンは炭素数 37〜40、trans 型炭素不飽和結合8類が生産する貯蔵脂質がトリグリセリドであることと大きくルを有することを明らかにした。

を2〜4 個、酸素 1 原子を有する直鎖状分子であることは世界中のハプト藻株から、アルケノン・アルケン分子

知られていたが、アルケンに関しては、trans 型に加えて、種の組成と含有量の定量解析を行い、最適株の選抜

cis 型炭素不飽和結合を有する2 種類の分子形が存在と燃料や化学改質に有利な C 29 アルケンを主生産脂質する。そこで筆者らは、アルケノン合成の中間体のバイオとするハプト藻類株の取得に成功した 19）。これらの成果リファイナリーとしての利用に関する研究において、アルケ

は、Drop-in-fuel として使用できる更に炭素鎖の短いハノン合成中間体の定量解析を行うとともに、アルケンやス

プト藻類株がスクリーニングにより発見できる可能性を示

テロールなどのアルケノン以外の脂質の分析を行い、構唆している。

THE CHEMICAL TIMES

2015  No.4
（通巻 238 号）

海洋微細藻類の光合成・物質生産と地球環境

シアノバクテリア、ユーグレナ、緑藻ドナリエラはトリア
シルグリセロールを貯蔵脂質として合成する。それらの藻類とアルケノン生産藻類であるハプト藻類円石藻 E.
huxleyi 株の乾燥藻体をPyrolysis 処理したところ、Crude
Oil の生産性とオイル回収率に関して、ハプト藻類が最も優位であることを示した。この成果は、現有用藻類の中で、ハプト藻類が原油成分生産に最適であることを示すものである。
中生代白亜紀における原油生産に寄与した微細藻類の 1 種である海洋ハプト藻類の長鎖脂質生合成系の解明に実績を上げ、当該微細藻類を利用した現代におけるバイオ燃料生産においても大きなポテンシャルを有することについて実験的証拠を積み上げつつある。それによって、藻類バイオ燃料開発に向けた基盤研究を推進し、今後の研究や技術開発において生物工学的な手法を駆使する際に必要な知見の拡充に努めることで、マリンバイオ
テクノロジーの発展に大いに貢献するものと考えられる。
アルケノン分子は、他の脂質分子と比較してバクテリ
アの分解を受けにくく、海底堆積物として良く保存されている。また、炭素数 37 で不飽和結合を2 個有するア
ルケノン分子（C 37：2 ）と3 個有する分子（C 37：3 ）の比（アルケノン不 飽 和 度 指 数）が培 養 温 度を変 化させた場合に変化する。これを利用すれば温度変化により性質の異なる化合物の生合成が可能である。また、アルケ
ノン合 成 種を用いた代 謝 改 変 技 術を確 立することによって、燃料使用に最適な中間代謝産物を合成させることが出来れば、大量の熱エネルギーを使用する熱分解によらなくても燃料適合性の化合物の合成が可能であると考えている。大量培養規模の拡大技術の開発により低コストなバイオリファイナリー生産の道が開かれていくことが期待される。

5）Heimdal, B.R. “Moder n Coccolithophorids”. Marine
phytoplankton. Thomas, C.R., ed. 1993. 147-248.
6）Charlson, R.J.; Lovelock, J.E.; Andreae, M.O.; Warren, S.G.
Nature. 1987, 326（6114）, 655-661.
7）Irigoien, X.; Huisman, J.; Harris, R.P. Nature. 2004, 429（6994）, 863-867.
8）Read, B.A.; Kegel, J.; Klute, M.J.; Kuo, A.; Lefebvre, S.C.;
Maumus, F.; Mayer, C.; Miller, J.; Monier, A.; Salamov,
A.; Young, J.; Aguilar, M.; Claverie, J-M.; Frickenhaus, S.;
Gonzalez, K.; Herman, E.K.; Lin, Y-C.; Napier, J.; Ogata, H.;
Sarno, A.F.; Shmutz, J.; Schroeder, D.; de Vargas, C.; Verret,F.; von Dassow, P.; Valentin, K.; de Peer, Y.V.; Wheeler, G.;
Emiliania huxleyi Annotation Consortium（Allen, A.E.; Bidle,
K.; Borodovsky, M. Bowler, C.; Brownlee, C.; Cock, J.M.;
Elias, M.; Gladyshev, V.N.; Groth, M.; Guda, C.; Hadaegh, A.;
Iglesias-Rodriguez, M.D.; Jenkins, J.; Jones, B.M.; Lawson,
T.; Leese, F.; Lindquist, E.; Lobanov, A.; Lomsadze, A.; Malik,
S-B.; Marsh, M.E.; Mackinder, L.; Mock, T.; Mueller-Roeber,
B.; Pagarete, A.; Parker, M.; Probert, I.; Quesneville, H.;
Raines, C.; Rensing, S.A.; Riaño-Pachón, D.M.; Richier, S.;
Rokitta, S.; Shiraiwa, Y.; Soanes, D.M.; van der Giezen, M.;
Wahlund, T.M.; Williams, B.; Wilson, W.; Wolfe G.; Wurch,L.L.）, Dacks, J.B.; Delwiche, C.F.; Dyhrman, S.T.; Glöckner,
G.; John, U.; Richards, T.; Worden, A.Z.; Zhang, X.; Grigoriev,
I.V. Nature. 2013, 499（7457）, 209-213.
9）渡邉信監修 . 藻類ハンドブック. NTS,2012, 824p.
10）辻敬典 , 白岩善博 . “炭素同化と初期代謝”. 藻類ハンドブック.
渡邉信監修 . NTS, 2012, 160-165.
11）Tsuji, Y.; Shiraiwa, Y. Perspectives in Phycology. 2015,
doi:10.1127/pip/2015/0029. https://www.schweizerbart.
de/papers/pip/detail/prepub/84870/Distinctive_features_of_photosynthetic_carbon_metabolism_in_secondary_endosymbiotic_algae.
12）Tsuji, Y.; Suzuki, I.; Shiraiwa, Y. Plant Cell Physiol. 2012, 53（6）, 1043-1052.
13）Tsuji, Y.; Yamazaki, M.; Suzuki, I.; Shiraiwa, Y. Mar.
Biotechnol. 2015, 17（4）, 428-440.
14）Wu, Q.; Dai, J.; Shiraiwa, Y.; Sheng, G.; Fu, J. J. Appl. Phycol.
（2）, 137-142.
1999, 1115）Wu, Q.; Shiraiwa, Y.; Takeda, H.; Sheng, G.; Fu, J. Mar.
Biotechnol. 1999, 1（4）, 346-352.

参考文献

16）Shi, Q.; Araie, H.; Bakku, R.K.; Fukao, Y.; Rakwal, R.;
Suzuki, I.; Shiraiwa, Y. Proteomics. 2015, doi:10.1002/
pmic.201500010. http://onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1002/
pmic.201500010/full.

1）Gibson, R. “October 14. The North Atlantic and North Sea”.
History of the Earth. http://historyoftheearthcalendar.blogspot.
jp/2014/10/october-14-north-atlantic-and-north-sea.html.

17）Kotajima, T.; Shiraiwa, Y.; Suzuki, I. Biochim. Biophys. Acta （10）, 1451Molecular and Cell Biology of Lipids. 2014, 1841
1458.

2）Field, C.B.; Behrenfeld, M.J.; Randerson, J.T.; Falkowski, P.
Science. 1998, 281（5374）, 237-240.

18）Nakamura, H.; Sawada, K.; Araie, H.; Suzuki, I.; Shiraiwa, Y.
Phytochemistry. 2015, 111, 107-113.

3）Liu, H.; Probert, I.; Uitz, J.; Claustre, H.; Aris-Brosou, S.;
Frada, M.; Not, F.; de Vargas, C. PNAS. 2009, 106（ 31）,12803-12808.

19）Nakamura, H.; Sawada, K.; Araie, H.; Suzuki, I.; Shiraiwa, Y.
Org. Geochem. 2014, 66, 90-97.

4）Brown, C.W. Oceanography. 1995, （8 2）, 59-60.

THE CHEMICAL TIMES

2015  No.4
（通巻 238 号）

9