免疫工学による免疫システム分子機構の解析
Analysis of molecular mechanisms in the immune system by immunoengineering

Ⅲ. タンパク質工学と細胞工学を有効に利用した抗体の作製

─ Production of antibodies by efficient utilization of protein and cell engineering ─日本医科大学

医学部

医学科

微生物学・免疫学

熊谷善博

Yoshihiro Kumagai
Department of Microbiology and Immunology, Nippon Medical School and Graduate School of Medicine, Tokyo, Japan

作製されている。このシリーズⅢでは、バイオテクノロジー

1. はじめにを有効に利用して、単なるモノクローナル抗体の作製をこのシリーズで紹介する免疫工学とは、免疫系の機能分子、担当細胞、個体を遺伝子工学、細胞工学、タンパ超えた次世代技術ともいえる研究手法や作製手法を、筆者の研究例を中心に紹介する。

ク質工学、発生工学などの、いわゆる、生命に手を加える手法で免疫機構の解明を試みたり、疾病の治療アイデアを提供する学問を指しているが、下記の 4 回のシリーズのうち、第 3 回目として、Ⅲ．
タンパク質工学と細胞工学

2. 遺伝子クローニングや遺伝子デザインによるモノクローナル抗体の作製：抗体の遺伝子配列情報を用いたモノクローナル抗体の作製を有効に利用した抗体の作製について紹介する。
細胞融合により作り出されたハイブリドーマ（Hybridoma）
Ⅰ. T 細胞抗原レセプター遺伝子トランスジェニックマウ
スを用いたアレルギー発症機構の解析

1）

Ⅱ. T 細胞抗原レセプター遺伝子トランスジェニックマウ
スを用いた免疫調節機構の解析
Ⅲ. タンパク質工学と細胞工学を有効に利用した抗体全てが、安定に大量のモノクロナール抗体を分泌してくれるわけではない。特定のハイブリドーマを選択株化した後も、ハイブリドーマは必ずしも安定ではない。筆者らは、マウス/ マウスの同種間ハイブリドーマの一部、マウス/ラットのハイブリドーマ、マウス/アルメニアンハムスターのハイブリドーマ，ヒト/ マウスのハイブリドーマ等のようなの作製
Ⅳ. エピトープ移植抗体

─タンパク質工学によるワク異種間ハイブリドーマにおいて、脱分化や染色体消失等を主因とした、高頻度の低産生株化や無産生株化チンの創製─を経 験している。このようなハイブリドーマによるモノク
KolerとMilstein によって、初めて単一の形質細胞ク
1）ローンに由来するヒツジ赤血球に対するモノクローナル

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ローナル抗体産生の欠点を克服する方法の 1 つがトランスフェクトーマによる抗体産生法である。

抗体が細胞融合法で作製されて以来、40年近くの歳月トランスフェクトーマの作製方法のついてはさまざまなが流れた。現在、様々なモノクローナル抗体が医学生方法が報告されてきた。細胞融合で作り出したハイブリ物学の研究のみならず、治療用生物製剤としても多用ドーマ、低抗体産生株化したハイブリドーマ、あるいは、され始めた。モノクローナル抗体の作製技術は、ほぼ確

Epstein-Varr virusで株化した抗体産生ヒト形質細胞株立されており、細胞融合と融合細胞の選択を基幹的ななどから抽出した DNA から、ゲノム遺伝子ライブラリー技術とするが、遺伝子工学、細胞工学、ならびに発生をファージやコスミドベクターで作製し、発現型の抗体ゲ工学の技術を組み合わせて有機的に利用することによノム遺伝子を取得したのち、遺伝子導入に用いる古典

り、多様なモノクローナル抗体や関連融合タンパク質が的な方法は、煩雑で時間や高度な技術を要するため最THE CHEMICAL TIMES

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近では用いられなくなった。現在は、簡便な方法として遺伝子増幅法（Polymerase Chain Reaction:PCR）を用い

Ⅲ. タンパク質工学と細胞工学を有効に利用した抗体の作製

3. 作製方法の流れる方法が主流となっている。ただし、抗体遺伝子は複数

図 1 に、筆 者が遂 行してきた作 製 法のプロトコール

かつ多様な遺伝子断片が遺伝子再構成のプロセスをを、図 2、3 に筆者の抗体遺伝子発現コンストラクトの一経て発現されるため、PCRに利用するプライマーのデザ例 2）,3）を示した。表 1，2，3 には、抗体遺伝子増幅に利インが肝要となる。

用する5ʼプライマーと3ʼプライマーについての、膨大な情報の中から、様々な抗体可変部遺伝子や定常部遺伝子に共用でき、なおかつ、抗体の遺伝子発現の転写翻訳の条件を満たし、試験管内抗体タンパク質産生に汎用性の高いものを、例示した。実際に作製を試みる場合に参考にしてもらいたい。ハイブリ
ドーマの樹立成功した後、抗体の特性に手を加えたり、抗体骨格を含むキメラタンパク質の創製には有用な方法である。図 4 に、筆者が作製した抗 DNP（ 2,4-dinitrophenyl）基に対するIgE 抗体遺伝子を、抗体 H 鎖とL 鎖の産生を欠落した SP2 形質細胞腫に導入することにより樹立したしたトランスフェクトーマの産生タンパク質の還元条件下二次元電気泳動パターンを示した。効率よく
抗 IgE 抗 体 H 鎖（図 4 右 写 真の楕円で囲んだ上 部）とL 鎖（楕 円で囲んだ下 部）が

図 1 遺伝子クローニングとトランスフェクトーマを用いたモノクローナル抗体の作製産生されていることがわかる。

図 2 ヒト抗体 H 鎖発現コンストラクトの例と制限酵素地図

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図 3 マウスL 鎖発現コンストラクトの例と制限酵素地図
表 1 マウス抗体遺伝子の cDNA 合成に利用する3’プライマーの DNA 塩基配列 2）

表 2 遺伝子増幅用マウスH 鎖可変部リーダー領域 5’センスプライマー2）

表 3 遺伝子増幅用マウスL 鎖可変部センスプライマー2）

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Ⅲ. タンパク質工学と細胞工学を有効に利用した抗体の作製

図 4 IgE 産生トランスフェクトーマの作製
抗 DNP（2,4-dinitrophenyl）基に対するIgE 抗体遺伝子を遺伝子増幅法を組み合わせて作製し、抗体 H 鎖とL 鎖の産生を欠落したSP2 形質細胞腫に導入することにより樹立したしたトランスフェクトーマの産生タンパク質の還元条件下 2 次元電気泳動パターンを示した。効率よく抗 IgE 抗体 H 鎖（図 4 右写真の楕円で囲んだ上部）とL 鎖（楕円で囲んだ下部）が産生されていることがわかる。左の写真は、抗体 H 鎖とL 鎖の産生を欠落したSP2 形質細胞腫のタンパク質合成パターン。検出には、高感度銀染色を用いた。

4. 二重特異性抗体産生融合細胞（クアドリオーマ）の作製

抗原に対応した抗体を作製することができる。異なった抗体可変部を単分子抗体に発現させたのが、クアドリオーマ（Quadrioma）である。

IgMは成熟分子として5 量体を形成し10 価のエピトー目的は多種多様にあるが、ニーズに応じて、がん細胞プ結合価を有する。2 量体 IgAは 4 価、IgG に代表されと毒 素 の 両 方をリンクできる抗 体 や 抗 原と ELISA

る単 量 体 抗 体では 2 価のエピトープ結 合 価を有する。

（Enzyme-linked Immunosorbent Assay）用酵素の両方

抗体の多価性を利用すると、抗体の特異性が複数のに反応する抗体などの報告がある 4）。
クアドリオーマの選 択 方 法には、図 5 に示した細 胞再融合と薬剤選択を組み合わせた方法や、図 6 に示したフローサイトメトリー（Flowcytometry）を用いた、2 種の蛍光標識後、細胞を再融合して選択する方法がある。作製された抗体の分子種によって、イオン交換クロマ

図 5 2 種のハイブリドーマの再融合と薬剤選択を利用したクワドリオーマの作製

図 6 フローサイトメトリーを用いたクワドリオーマの選択

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トグラフィー、逆相クロマトグラフィー、あるいは、親和性ク

伝子改変抗体で、現在、20 種類近くの分子標的抗体ロマトグラフィーを組み合わせた高 速 液 体クロマトグラががん治療や抗炎症治療薬として使われている。ただフィーにより、二重特異性抗体を精製できる。

し、患者と社会への経済的負担が多大で、製薬会社の経済的な成功と医療上の社会的成功は全く別の問

5. モノクローナル抗体の利用：抗体分子の遺伝子改変とモノクローナル抗体を用いた分子標的治療

題である。それに加え、モノクローナル抗体による標的治療は、元々、このシリーズのⅠで紹介した免疫のパラダイム 6）のバランスを大きく崩す本質を抱えており、副作用については長い時間軸を設定すればするほど未知

近年、抗体や抗体のキメラ分子を用いた分子標的数で、モノクローナル抗体による標的治療が、未来永治療が臨床治療の現場で多用され始めている。分子劫に定着するかどうかについては懐疑を抱かざるを得

標的治療（targeted therapy）とは、特定の分子を標的とない。

して、その分 子の機 能や動態を制 御する治 療 法である。抗体やキメラ抗体を用いる場合は、標的分子への高い特異性を利用し、リガンドとその受容体の反応を阻止する活性を、主に利用している。

モノクローナル抗体作製技術の確立にノーベル賞が目的は、ガン治療や炎症反応の治療などであるが、ガ授与され 1）、臨床検査、研究、治療等さまざまな目的にン細胞排除や炎症に関わる分子を特異的に抑えること汎用されている。免疫グロブリンは血中で安定性の高いを主目的とする。従来の多くの薬剤もその作用機序を探タンパク質であり、標的特異性にのみならず、標的に対ると何らかの標的分子を持つが、分子標的治療は創薬する持続的効果を発動することができる。これと対照的や治療方法の設計段階から、分子標的を定めているに、時を同じくした頃、試験管内実験では効果が確認で点で大きく異なる。

きるアンチセンスDNA やアンチセンスRNAを用いた製

20 世紀初頭に抗破傷風毒素に代表される血清療法が開始されたが、破傷風毒素を標的とした抗体の毒素剤は、標的細胞核への到達が不充分で、実用化への道のりは遠いと思われる。

中和活性を利用していることから、現在の抗体活性を一方、抗体関連製剤の開発は活況で、次世代モノク利用した分子標的療法の起源は、血清療法にあるとい

ローナル抗体と呼ばれる、放射性同位体結合抗体や、える。血清から免疫グロブリンのみを精製して用いたも標的特異性だけを重視し、抗体低上部が副次的に発のを免疫グロブリン製剤（第 1 世代抗体医薬品）と呼ん

動する補体結合反応や抗体依存性細胞障害活性等でいるが、標的抗原特異性を有する抗体製剤が第 2の生物活性をキャンセルした、抗体可変部位のみの単世代抗体医薬品として登場した。開発初期は、マウス鎖抗体なども開発されつつある。

モノクローナル抗体を利用していたが、マウスモノクロー筆者も、可変部だけを持ち、標的に対し結合特異性ナル抗体はヒトに対して異物であるため、大量にヒトにのみを有する単鎖抗体（sinngle chain antibody; scAb）

投与すれば、HAMA（human anti-mouse antibody）が誘や可溶性単鎖 T 細胞レセプター（sinngle chain T Cell

導され、血清病による強いアナフィラキシーを誘導する

Receptor; scTCR）の作 製に成 功している（図 7 参 照、ため、ヒト型モノクローナル抗体へ改変が遂行されてき未発表データ）。また、このシリーズの 4 回目として次回た。製剤名の末尾に−omabと付くものはマウスモノク

紹介するが、抗体の超可変部に様々なアミノ酸配列をローナル抗体を意味し、−ximabと付くものは、抗体可導入し、モノクローナル抗体を抗原として作製し、ワク変部はマウス抗体であるが、定常部はヒト抗体に改変チンに利用するという次世代抗体（図 8）も注目を集めしてあるキメラ抗体である。可変部も定常部もヒト型であている。

る抗体は、末尾が−zmabと命名されている。
昨 今、分 子 標 的 治 療を目的とした生 物 製 剤 の 約
30％はモノクローナル抗体を骨格としたキメラ抗体や遺18

6. おわりに

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Ⅲ. タンパク質工学と細胞工学を有効に利用した抗体の作製

図 7 可変部のみを有する単鎖抗体（sinngle chain antibody; scAb）や可溶性単鎖 T 細胞レセプター（sinngle chain T Cell Receptor; scTCR）
抗体可変部や、T 細胞レセプターα鎖、β鎖可変部を遺伝子増幅法により作製し、トランスフェクトーマを作製する技術を組み合わせ、中央に自由度の高いリンカー（Linker）を人為的に組み込んだ単鎖分子を作製した。左図は、精製分子の電気泳動図（クーマジーブリリアントブルー染色）、右図は、scAbとscTCRの構造模式図。

図 8 エピトープ分子移植によるエイズワクチンの創製模式図 8）

参考文献
1）Köhler, G.; Milstein, C. Nature, 1975, 256, 495-497.
2）熊谷善博 . 臨床消化器内科 . 2001, 16（7）, 815-823.
3）Kumagai, Y. Vaccines 94: Modern Approaches to New Vaccines
Including Prevention of AIDS. Norrby, E., ed. Cold Spring
Harbor Laboratory Press, 1994, 9-14.
4）Kumagai, Y. Vaccines 96: Molecular Approaches to the Controlof Infectious Diseases. Brown, F.; Norrby, E.; Burton, D.;
Mekalanos, J. eds. Cold Spring Harbor Laboratory Press, 1996,283-288.

5）Fanger, M.W. Bispecif ic Antibodies（Molecular Biology
Intelligence Unit）. R.G. Landes, Austin, Tex, 1995, 110p.
6）Shin, D.S.; Ribas, A. Curr. Opin. Immunol., 2015, 33, 23-35.
7）Callahan, M.K.; Wolchok, J.D. J. Leukoc. Biol., 2013, 94, 4153.
8）Kumagai, Y. J. Nippon Med. Sch., 2011, 78（2）, 66-67.

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