計測自動制御学会産業論文集
Vol.6, No.4, 23/30 (2007)

蛍光ダイナミクス情報を利用したフローサイトメトリーによる FRET 検出
中田 成幸*・林 弘能*・星島 一輝*
土井 恭二*・木村 憲明*

Flow Cytometric FRET Detection Using Fluorescence Dynamics Data
Shigeyuki NAKADA *, Hironori HAYASHI *, Kazuteru HOSHISHIMA*
Kyouji DOI *, Noriaki KIMURA*
Abstract: It has been verified that FRET(Fluorescence Resonance Energy Transfer) phenomenon is utilized for detecting molecularinteractions of proteins in a living cell. In this work, we present a rapid and assured FRET detection method for living cells proposing the
new flow cytometric equipment which is capable of measuring its fluorescence lifetime change. FRET-based approaches for protein
interactions in living cells are powerful but are limited due to the uncertainty of the donor and acceptor chromophore representation. By
measuring the fluorescence lifetime data in addition to the intensity data, a simple, quantitative and multidimensional analysis is realized
for FRET detection. Measurements of Ras-Raf protein interactions are shown to evaluate that this approach is available. It’s derived thatthe detection can be executed as a rapid (~thousands of cell/sec) and a sensitive (~0.02nsec lifetime resolution) measurement.
Keywords: fluorescence resonance energy transfer (FRET), fluorescence lifetime, flow cytometry, protein interaction in living cells

１． まえがきと，それらが近接した場合にドナーからアクセプタへエネルギーが生体内で起こっているさまざまな生理機能は，細胞内のタ移動し，ドナーを励起すると，アクセプタが光る．タンパク質の結ンパク質や低分子化合物が互いに結合・解離することにより成合や構造変化が起きた時にのみ蛍光色素が近接しFRETが誘起さり立っている．ヒトゲノム解析が一段落した近年，細胞中でのれることから，タンパク質の相互作用を検出できる手段となってい遺伝子の機能を解明し，疾病発症と深く関わるシグナル伝達をる3) 4)．
近年 GFP(Green Fluorescent Protein)を始めとした多種の蛍調査するため，これら分子間相互作用研究の重要性が増してきている 1)．

光タンパク質が開発され，これらを細胞内で発現させることがでこれらタンパク質の相互作用は，セントラルドグマと呼ばれきるようになってきており，生細胞内での情報伝達の研究にFRET を活用することが有効になってきている5) ～9)．

る先天的情報だけでなく後天的情報が影響していることが考えられるため，後天的情報を蓄積した生細胞中で実施されるこ

これらの研究は，顕微鏡イメージングを主な手段として実施さとが望ましい 2)．

れてきたが，1 日に観察できる細胞の数は限られること，定量的近年，生細胞中でこれらタンパク質の分子間相互作用を検出な評価が困難であることなどから，研究効率を上げていくためにする技術として，蛍光共鳴エネルギー移動（fluorescence

新しいFRET 検出の手法が望まれている．

resonance energy transfer: FRET）現象を利用した手法が適用

本研究では，生細胞中での FRET を高速かつ確実，定量的に検され多くの論文が執筆されてきている．

出することを目標に，細胞を高速に流しながら 1 細胞ごとの蛍光強度

FRETは，２種の蛍光物質がごく近傍に存在し，一方の蛍光波を計測すると同時にその蛍光寿命情報を検出できる新しいフローサ

長がもう一方の吸収波長と重なる場合に励起エネルギーが移動

イトメータ(Flicyme® :Fluorescence Lifetime Cytometer)を提案し，する現象を言う．注目する２つのタンパク質に２種類の蛍光色

実際の細胞内FRET の検出を行った結果について述べる．

素を結合し，一方の蛍光色素（ドナー）の蛍光波長がもう一方

FRET が発生し，ドナーからアクセプタへエネルギーが移動すの蛍光色素（アクセプタ）の励起波長に重なるように選択する

るとドナーの蛍光寿命が短縮することが知られている 3) 4)．これを検出パラメータとしたFRET 検出は，蛍光量変動の影響を受けに*三井造船(株) 玉野技術開発センター 玉野市玉原 3-16-1*Mitsui Engineering & Shipbuilding Co.,Ltd., Tamano Technology

くく，かつ定量的な FRET の程度（FRET 効率）をより直接的にCenter, Tamano

求めることができる．

（Received November 1 , 2006）23

これまで，フローサイトメータをベースとして蛍光寿命情報

dFd (t )(kd kt ) Fd (t ) k df N d 0u (t )dtdFa (t ) kafkt Fd (t ) k a Fa (t ) kaf N a0u (t )dtkdf

を同時に取得し，それを基に FRET 検出が試みられた報告は見られない．
蛍光寿命計測とフローサイトメトリー計測のメリットを併

(3)
(4)

ここで，添字 d，a は，ドナー，アクセプタのパラメータである
ことを示しており，
k d , k a ：ドナー，アクセプタの k f k nr [1/s]せ持たせることにより，膨大な細胞の FRET 効率を短時間に計測することができ，信頼性の高い統計的データを得ることができる．したがって，細胞内シグナル伝達の探索や薬理候補化

k df , k af ：ドナー，アクセプタの k f [1/s]

合物のスクリーニングなど，大量のサンプルについてたんぱく

N d 0 , N a 0 ：ドナー，アクセプタの N 0 [個/cm3]

相互作用を調査する用途に有用であり，基礎医学や創薬の研究

k t ：共鳴エネルギー移動の速度定数[1/s]

開発の効率向上に寄与できるものと考えられる．

である．

本報では，まず FRET の蛍光ダイナミクスのモデル化によ

蛍光分子の蛍光波長スペクトルはある範囲で広がっており，通常

り蛍光寿命計測が蛍光色素の標識量やpH変化の影響を受けにそれぞれの蛍光を多く検出できる波長領域を選択し，その領域を透くい FRET 効率の計測法であることを示す．つぎに，試作し過させる光学フィルタを通して検出している．また，蛍光の発光原

たフローサイトメータについて述べ，蛍光寿命計測の概要につ理からそのスペクトルは特に長波長側に幅広く広がる特性を持っいて述べる．また，装置としての蛍光寿命計測精度について検ているため，ドナーの蛍光がアクセプタの蛍光領域に相当量混入す討を行った結果について述べる．その後，実際の細胞についてる場合が多く，以下の漏れ込みを考慮する必要がある．

FRET 計測試験を行った結果を示し，蛍光寿命フローサイトメ

dFda (t )kda Fda (t ) kdaf N da 0u (t )dtータの有効性を示す．

(5)

ここで，添字daはアクセプタ波長領域へ漏れ込んだドナー蛍光に関

２． FRET蛍光ダイナミクスモデル

する同様なパラメータである．

時刻０に理想的なパルス光源で励起された蛍光分子の蛍光(3)〜(5)式に対しラプラス変換を施し，ドナーおよびアクセプタ

強度（単位体積から放射される光子の数）の時間変化 F (t ) [個
検出波長域で観測される蛍光量 Fdonor , Facceptor を求めると，(6)，/cm3]は以下となる 10)．
F (t ) k f N (t ) k f N0e

(k f knr )tk f N0e t / (7)式となり，蛍光ダイナミクスのブロック図はFig.1で示される．

(1)

k N *  df d 0 d Fdonor ( s ) Fd (s ) U ( s)
* 1 d s 



ここで，
N (t ) ：励起状態にある単位体積中の蛍光分子数[個/cm3]
N 0 ：時刻0 で励起状態にある単位体積中の蛍光分子数(6)Facceptor ( s ) Fa (s ) Fda ( s )[個/cm3] k  N * N  kaf  t a  d 0 d  a0 a 
1 a s 1 * s 1 a s 

d

 
kdaf N da0da U ( s)(7)
1 da s 

k f ：発光遷移の速度定数[1/s]k nr ：共鳴エネルギー移動を除く無輻射遷移の速度定数[1/s]

1 /(k f k nr ) ：蛍光寿命（蛍光緩和時定数）[s]であり， N 0 は，蛍光分子のモル吸光係数，モル濃度に依存する量であり，蛍光分子の標識量が変わると変化する量である．
インパルス応答が(1)式で表現される系の微分方程式は，レU (s )

ーザの入射パワーを u (t ) [1/s]とすると，以下で表現される．
dN (t )
(k f knr ) N (t ) N0u (t )
dt

Donor

k daf N da 0da
1 da s
N d 0d*
1 d* s

Fdonor (s )

k df

(2)

kt

以上の準備を基に，細胞内にドナー，アクセプタ蛍光タンパ
ク質が近接して存在し，FRETが発生する蛍光モデルを求める．
N a0

FRETが発生する場合の特徴は，ドナー分子の励起された電子が発光遷移，無輻射遷移，共鳴エネルギー移動の競合により基

+

+

FRET
k af a
1 a s+Facceptor (s)+Acceptor

底準位に落ちること，アクセプタ分子の電子がエネルギー移動
により追加励起されることであり，蛍光モデルは以下で表現でFig.1 Fluorescence Dynamics Model of FRET

きる．

24

ここで，

d* = 1 
k d k t ：FRET発生時のドナー蛍光寿命[s]ADC &Analyzing PC

Stained Cell
Sheath fluida = 1 k a ：アクセプタの蛍光寿命[s]da = 1 k da ：ドナーのアクセプタ領域での蛍光寿命[s]Excitation
Laser
Oscillator

である．

PMT
Demodulation
Signal
Processing
Board

エネルギー移動の程度を表現する共鳴エネルギー移動効率 E
は，ドナーに吸収された光子エネルギーのうちアクセプタへ移Intensitymodulated
Laser

送されたエネルギーの比率で定義されており，以下となる11)．

kt
Ekd kt

*d
1 
d

LaminarSheath Flowin Cuvette(8)

ここで，d (1 k d ) はアクセプタが存在せずFRET が発生し

Forward Scatter
SignalPhoto Diode

Intensity-modulatedFluorescenceFig.2 Measurement System of Flicyme®

ない時のドナーの蛍光寿命である．したがって，蛍光寿命が計測できれば，FRET 効率が(8)式より簡便に求められることになる．
従来，主に実施されている蛍光強度の測定は，(3)～(5)式でd dt 0 あるいは(6)，(7)式で s=0 とした静的な蛍光強度を計測していることに相当する．すなわち，ドナー蛍光強度は，

Fdonor k df N d 0d*

(9)アクセプタ蛍光強度は，* N  k
Facceptor kaf kNt a d 0 d daf N da 0da
a
0
a



(10)

となる．したがって，FRET現象により k t が０でなくなり，d*がd に比較して小さくなると，ドナー蛍光強度が減り，アクセプタ蛍光強度が増加する．この変化をとらえることでFRET検出が可能となるが，ドナー，アクセプタの標識量が異なる場
合や溶液の変質などにより細胞内のpHが変化しモル吸光係数

Photo 1 Appearance of Flicyme®

が変化する場合には，N d 0 , N a 0 , N da0 が変化することになり，この方法ではそれらの影響を直接受けてしまうことになる．一方，蛍光ダイナミクス（蛍光寿命）を測る方法では，原理的に標識量やモル吸光係数変化の影響は受けにくい．
以上の定式化から，ドナー波長領域の蛍光からドナー蛍光寿命

弦波信号を復調することにより，蛍光強度信号の振幅と位相を１細を求めてFRETを評価する方法がもっとも簡便で直接的，定量的

胞ごとに検出できる構成となっている．すなわち，(6)，(7)式の伝であることが確認できる．基準の蛍光寿命d は，アクセプタを達関数の周波数応答を検出できることになる．位相差法に基づく信発現させないサンプルやアクセプタは存在するがドナーと結合号処理回路は，レーザ励起信号と蛍光信号の相互相関を計測し，そしないことが既知のサンプルから計測できる．調査対象サンプ

れらの位相差と振幅値を求めるもので，弊社でこれまでに開発した

ルのFRET効率は，そのドナー蛍光寿命値を*d として，(8)式か

マルチパスリニアアレイレーダ12) の技術をベースとしている．
レーザのパワーu (t ) に角周波数M の正弦波を与えた時の蛍光

ら簡便に求められる．

信号は同じ角周波数をもつ正弦波で出力される．入力信号と出力信３． フローサイトメータによる蛍光ダイナミクス計測

号の振幅の比および位相差は，(6)，(7)式で s jM とした時の複3.1 概 要素平面上のベクトル和として以下のように表現される．
Fdonor (s )Pd e jd
(11)
U ( s)
Facceptor ( s )Pt e jt Pae ja Pbae jba
(12)
U (s)

試作したフローサイトメータ（Flicyme®）の概要をFig.2に，外観をPhoto1に，仕様をTable1に示した．レーザ照射場に細胞を1粒子ずつ高速に流し，発生した蛍光を光学フィルタで分光し波長域ごとの蛍光を電気信号に変換して処理する．レーザ出力

ここで，を高速で正弦波状に変化（振幅変調）させ，放射された蛍光正25kdf N d 0d*

Pd 

,
2

Table 1 Specifications of Flicyme®
Light Source
Laser Diode 407nm，60mW
Scattering Light 2 Ch
Detection
Fluorescence Intensity 3 Ch
Parameter
Fluorescence Lifetime 3 Ch
Forward Scatter : Photo Diode
Detector
Side Scatter : PMT
Fluorescence : PMT
482／35ｎｍ （for CFP,AG etc.）
Wavelength of
542／30ｎｍ （for YFP etc.）
Detectionor 579／34nm (for KO etc.)
650 Long Pass (for Keima etc.)

d tan 1*d M1 
d* M Pt k afkta

N d 0d*2
1 
aM 

2*
1 d M a *d 
M




1

1 *

1
, t 
tan aM tan d M 
tan2
1 ad* M
Pa 
Pda 

kaf N a 0a2
1 aM , a tan 1aMkdaf N da 0da2
1 daM 1 
, da tan 
da M

Sample Flow Rate

6 m/s

Sample Flow
VolumeLo： 40μL/min
Mid： 80μL/min
Hi： 160μL/min

Maximum
Acquisition Rate
Frequency ofModulation
Size

となる．
Flicyme®を使用することにより，そのドナー波長領域の検出
チャンネル（Ch）から(11)式の振幅値 Pd と位相角d が１細胞

10,000 events/s
28MHz
500(W)×675(D)×700(H)ごとに計測される．以上の式から，蛍光強度が振幅値 Pd から求められ，ドナー蛍光寿命*d が位相角d から次式により求められる．
Change of Position Δx

*d tan d M(13)
Laser Beam

LASER

PhotomultiplierTube(12)式の右辺第1項はFRETにより増加する蛍光，第２項はアRail

クセプタがドナー励起レーザにより直接励起される蛍光，第３Position Δx=0cm

項はドナー蛍光がアクセプタChへ漏れ込む蛍光であり，アクセ

Δx=10cm

Round Continuously
Variable ND Filter

プタ波長領域の検出Chから計測される情報は，これらのベクト
ル和の振幅と位相角になる．したがって，アクセプタ波長領域の蛍光を分析することにより多面的な参考情報が得られるが，Signal Processing
Unit

直接励起蛍光や漏れ込み蛍光の影響を受けてしまうので，精度

Computer

よく解析するためには，蛍光補正（キャリブレーション）が必要である．現在蛍光強度情報を利用したFRET解析で主に利用さ

Fig.3 Block Diagram of Accuracy Measurement Test

れているレシオメトリーは，蛍光発現量（標識量）の変動の影
響を緩和するために，アクセプタ蛍光強度をドナー蛍光強度で割った比を以って評価されているが，ドナーとアクセプタの標識量が1対１とは限らない分子間FRETの系では，複雑な補正が

0.350

いる．

0.300
Time Δτ[nsec]必要であるなどシグナルノイズ比が上がりにくい理由となって

3.2 精度試験
蛍光情報からFRETを検出するためには，高分解，高精度な計測が必要とされる．装置のレーザ，光電子増倍管(PMT)，信号

150nW
80nW
20nW
Desired Value

0.250
0.200
0.150
0.100

処理モジュールを組合せた特性試験を実施し，蛍光寿命計測の0.050

精度を推定した．

0.000
0

実際に使用するレーザ，
PMT，
信号処理モジュールを使用し，

2

4
6
Position Δx [cm]8

Fig.3に示すレーザと光電子増倍管を対向させる実験系を構築した．変化した走行距離x ，等価蛍光寿命と位相差 とのFig.4 Variance of Laser-PMT Interval

間に以下の(14)式の関係が成り立ち，位相差が小さい場合は(13)ＶＳ Equivalent Lifetime

式と同等な評価が可能である．（c :光速度）

26

10

M


x M c(14)
Phase θ[rad]走行距離を0から10cmまで変化させた時の等価蛍光寿命をFig.4に示す．プロット値は，実際に粒子がレーザ照射場を通過する時間20μsecの計測を10,000回繰り返した統計データの中央値であり，直線は光速度から求めた理想値を示す．Fig.4より，Phase θ[rad]各プロット値は光強度に関わらず理想値と良い一致を示していることがわかる．また，この計測結果から，距離約5mmに相当
する0.02nsec程度の時間精度が得られていると考えられる．
Fig.5に各光強度における光の走行距離の変化量 x と位相角の箱髭図を示す．上下に伸びた線分である髭の末端は最大，

Phase θ[rad]最小を表し，統計データの25%に相当する第１四分位と75%に相当する第３四分位を箱の上下辺で表現しており＋記号は中央値を示す．この結果から光強度が弱くなるにつれ，位相角統計
データの分散が大きくなることがわかる．これは，光強度が弱くなることは計測系が内包する熱雑音成分に比べ相対的に信号成分が小さくなることに起因していると思われ，妥当な結果で

3.2
3.1
3
2.9
2.8
2.7
2.6
2.5
2.4
3.2
3.1
3
2.9
2.8
2.7
2.6
2.5
2.4
3.2
3.1
3
2.9
2.8
2.7
2.6
2.5
2.4

0

2

4

6

8

10

0

2

4

6

8

10

0

2

4

6

8

10

Position Δx [cm]あると考えられる．また，統計データの中央値はFig.4に示した
ようにほとんど変化していないことがわかる．

Fig.5 Box-and-Whisker Plot of Phase Angle
４．試験結果4.1 分子間（2 分子）FRET の計測結果
２つのタンパク質分子間の結合を生細胞で調査するのに適した分子間FRET の構成を Fig.6 に示す．細胞サンプルは，浮遊系の細胞 293F に癌遺伝子産物である Ras と Ras のエフェ
mKOmutant

クター分子であるセリン・スレオニンリン酸化酵素Raf をそれ

Ex.407nm

mAGmutant

ぞれドナー（AG:Azami-Green 変異体）13)とアクセプタ（KO:Kusabira -Orange 変異体）14)の蛍光タンパク質ととも
Rafに細胞内に発現させたものである．FRET が発生することが知られているポジティブコントロール（No.1）として RasV12

Ras

Em.499nm

Acceptor:
Donor:
Raf+mKOmutant Ras+mAGmutant（Ras の恒常活性化型変異体で Raf と結合することができる）

Activationを使用したものを，比較対象（ネガティブコントロール）としてアクセプタ側に Raf が存在しないもの（No.2），およびInactivation
Ex.407nm

RasN17（ドミナントネガティブ型 Ras）を使用したもの

Em.561nm（No.3）を用意した 8)．10 万細胞の計測結果を Fig.7 に示す．

Em.499nm

上段の Fig.7(a)～(c)は，それぞれのドナー，アクセプタの蛍光
波長帯域に対応した蛍光強度のカラーデンシティプロットである．ドナー用として中心波長482nm 半値幅35nm，アクセ

Fig.6 Architectonics of Ras-Raf intermolecular FRET

プタ用として中心波長579nm半値幅34nmのバンドパスフィ
ルタを使用している．下段左の Fig.7(d)は，細胞の大きさに比例する前方散乱光強度のヒストグラムであり，No.1～3 でほぼれた No.1 のデータは，レシオメトリーが増加する方向へ，ドナ

同等の細胞が流れていることが確認できる．Fig.7(a)～(c)で蛍ー領域の蛍光寿命も 0.22nsec 程度短くなる方向へシフトし，

光タンパク質が多く発現している細胞集団を選択し，それらにFRET が発生していることが計測されている．蛍光寿命のシフト

ついてレシオメトリー（アクセプタ領域蛍光強度／ドナー領域値から(8)式を利用してFRET 効率を求めると5.5%と計算された．

蛍光強度）を計算したものを Fig.7(e)に，ドナー領域の蛍光寿命を計算したものを Fig.7(f)に示した．蛍光寿命ヒストグラム

4.2 分子内（1 分子）FRET の計測結果の横軸は 10ns を 1023Ch としたCh 値で表現している．2 種

細胞内の状態変化によりタンパク質の構造が変化したかどうのネガティブサンプルのデータはほとんど重なっており計測かを調査するFRET プローブが種々開発されてきている．ここでの再現性が確認されている．また FRET が発生すると予想さは，Fig.8に示したRaichu (Ras and interacting protein chimeric27

No.1 Positive

3

10

104

No.2 Negative
FL:407-579/34

104

FL:407-579/34

FL:407-579/34

104

3

10

24.4

102

12.1

102

101

101

100
0
10

1

10

10

2

3

4

10

10

100
0
10

1

10

10

2

3

10

4

10

No.3 Negative

No.1 Positive: mAGmutant-RasV12
vs Craf-mKOmutant Cell: 293F

3

10

15.5

No.2 Negative: mAGmutant-RasV12
vs mKOmutant
Cell: 293F

102

No.3 Negative: mAGmutant-RasV17
vs Craf-mKOmutant Cell: 293F

101

100
0
10

1

10

10

2

3

10

FL:407-482/35

FL:407-482/35

FL:407-482/35

(a)

(b)

(c)

4

10

No.1 FRET Efficiency=5.5%

1500

No.3 Negative

2000

No.2 Negative

1500

No.1 Positive

1000

Normalized Cell Frequency

Cell Frequency

2500

100

Ratiometry
Cell Frequency

FSC

No.3 Negative

1000

No.2 Negative
No.1 Positive
500

500

0

0
0

200

400

600

800

Forward Scatter

(d)

1000

Lifetime

80

No.3 Negative60

No.2 Negative40

No.1 Positive

20

1023Ch=10nsec

0
0

0.5

1

1.5

2

2.5

0

FL:407-579/34／FL:407-482/35

100

200

300

400

500

Lifetime:407-482/35

(e)

(f)

Fig.7 Experimental results of Flicyme® for intermolecular FRETunit) 15) と呼ばれるRasスーパーファミリーG タンパクの活性化モニターを利用した試験について述べる．前節と同じ mAG

Ex.407nm
mAGmutantmKOmutant

変異体，ｍKO 変異体を使用し 3 種のサンプルについて比較検Raf討を行なう．ポジティブコントロールとしてRasV12－Raf をRas
Em.499nm

組合せたもの（No.4），および RasWT－Raf の組合せに Ras

Acceptor:
Raf+mKOmutantの活性化因子 mSos を加え FRET が起きるようにしたもの（No.5），ネガティブコントロールとして活性化因子が存在しActivation

なければ構造変化が起こらない RasWT－Raf を組合せたもの

Donor:
Ras+mAGmutant
Inactivation
Ex.407nm（No.6）を準備した．
Em.561nm

10 万個の細胞に対して計測を実施した結果を Fig.7 と同じ

Em.499nm

表現で Fig.9 に示す．No.6 のネガティブサンプルに対して，2種のポジティブサンプル（No.4,5）の FRET 発生を計測できていることを確認した．蛍光寿命ヒストグラムのピークシフト
からFRET 効率を計算すると，No.4 が 8.5%，No.5 が 14.3%

Fig.8 Architectonics of Ras-Raf intramolecular FRETと推定された．このことは，恒常的に活性な RasV12 を使用した分子間相互作用よりも活性化因子mSosが存在する場合の相互作用の方が強いことが予測されるもので，妥当な結果であると考えられる．レシオメトリーによるヒストグラムからもほぼ験を実施した．4 章の実証試験で得られた蛍光強度は，3.2 節で調同様な結果が得られている．

査した光強度20～150nWの範囲内であり，蛍光寿命は 0.02nsec程度の精度で計測できていると考えられる．この結果からドナー

５．結果の考察

蛍光寿命の短縮による FRET 検出の有効性が実証されたと考え

分子間相互作用および分子内相互作用の 2 ケースについて，られる．また，レシオメトリーの情報に加えて，蛍光寿命情報を高速に流しながら細胞内の蛍光情報からその蛍光寿命を計測計測することにより多面的な評価となり，より確実な検出につなし，その変化から細胞内での FRET の発生有無を検出する試

がることが考えられる．

28

104

46.3

102

101

1

10

10

2

3

4

10

10

No.6 Negative
FL:407-579/34

3

10

100
0
10

3

10

37.4

102

101

100
0
10

1

10

10

2

3

10

4

10

No.4 Positive: mAGmutant-RasV12-RafRBD-mKOmutant Cell: 293F

3

10

44.8

101

No.6 Negative: mAGmutant-RasWT-RafRBD-mKOmutant Cell: 293F

100
0
10

1

10

2

10

3

10

FL:407-482/35

FL:407-482/35

(a)

(b)

(c)

FSC

Ratiometry
No.6 Negative

1500

Cell Frequency

No.6 Negative

2000

No.5 Positive
1500

No.4 Positive
1000

No.5 Positive
1000

No.4 Positive
500

500

0

0
0

200

400

600

800

1000

Forward Scatter(d)

No.5 Positive: mAGmutant-RasWT-RafRBD-mKOmutant +mSos
Cell: 293F

102

FL:407-482/35
2500

Cell Frequency

No.5 Positive
FL:407-579/34

FL:407-579/34

No.4 Positive

104

10

4

No.4 FRET Efficiency=8.5%
No.5 FRET Efficiency=14.3%
100

Normalized Cell Frequency

104

Lifetime
No.6
Negative

80

60

No.5
Positive40

No.4
Positive

20

1023Ch=10nsec

0
0

0.3

0.6

0.9

1.2

0

100

FL:407-579/34／FL:407-482/35

200

300

400

500

Lifetime:407-482/35

(e)

(f)

Fig.9 Experimental results of Flicyme® for intramolecular FRET

Flicyme®で計測できるのは，細胞から出射される蛍光全体か困難であり，蛍光強度のみの評価ではこの不確定要素の影響を受ら求められる蛍光寿命であり，平均的な FRET 効率である．

ける可能性がある．タンパク質相互作用解明に応用範囲が広く重多成分系の蛍光分子の場合は，各成分の強度で重み付けした平要な分子間FRET がより使い易くなる効果を期待できる．

均値（ベクトル和）が求められる．
FRET の検出と概略の FRET

これらの成果により，細胞内のたんぱく質相互作用の効率的か

効率を把握する目的には，これらの平均的な蛍光寿命が有益なつ確実なハイスループットスクリーニングに利用できるものと考情報に成り得ると考えられる．

えられる．

また，蛍光分子が標識された対象分子のうちすべてが結合す

さらに，最近では３種の蛍光タンパクを使用し２段階のエネル

るとは限らず，対象分子の内のどの程度の割合の分子が結合しギー移動を検出した研究も行われ始めた 17)．細胞内の複数のたのか調査したい場合には，FRET を起した分子のみのFRET

FRET 現象を同時に検出する場合，従来の方法ではドナー，アク

効率（最大FRET 効率）を求める必要がある 16)．この場合は，セプタの両方の蛍光を観測する必要があった．本手法は，ドナー同条件のサンプルで発現量を増加させ FRET 効率の飽和点を蛍光のみで FRET 検出が可能であり，よりシンプルなマルチ

最大FRET 効率として推定する方法が使用できる．

FRET 系の構築に利用できるものと期待される．

６．まとめ

謝

辞

位相法を応用し，細胞を高速で流しながら1 細胞ごとの蛍光本研究で用いた細胞サンプルは京都大学医学研究科 松田道行

寿命を計測できる装置を試作し，その分解能・精度について述

教授にご提供いただき，FRET 検出への多大なるご指導をいただ

べ，細胞内での FRET 現象を検出できることを実証した．毎いた．また，蛍光タンパク質については理化学研究所 宮脇敦史

秒数千細胞の計測スピードで 0.02nsec 程度の蛍光寿命精度が博士，Amalgaam㈲殿にご協力いただき，計測結果についてもご得られ，簡便に FRET に関する定量的な情報が得られること

議論，ご指導をいただいた．ここに記して深甚なる謝意を表しまが確認できた．

す．

また，従来の蛍光強度のみで行なう手法に比較して，蛍光寿
命情報を組合せることにより多面的な情報となり，より確実な検出となることが期待される．特に，分子間 FRET の検出系
ではドナーとアクセプタの蛍光分子を等量発現させることは29

［参 考 文 献］

［著 者 紹 介］

1） 竹縄忠臣:タンパク質相互作用研究のストラテジー, バイオテクノロジ
ージャーナル, 5-5-6, 670/673, (2005)
2） Yasuda K: On-Chip single-cell-based microcultivation method
for analysis of genetic information and epigenetic correlation ofcells, J. molecular recognition, 17-3, 186/193, (2004)
3） Andrews David L., Demidov Andrey A.: Resonance Energy
Transfer, Wiley, (1999)
4） Cristobal G. D. Remedios, Pierre D.J. Moens: Fluorescence
Resonance Energy Transfer Spectroscopy is a reliable “Ruler”
for measuring structural changes in proteins, J. Struct. Biol.,
115, 175/185, (1995)
5） Nathan C Shaner, Paul A Steinbach & Roger Y Tsien: A guideto choosing fluorescent proteins, Nature Methods, 2-12,
905/909, (2005)
6） Miyawaki A. et.al: Fluorescent indicators for Ca2+ based on
green fluorescent proteins and calmodulin, Nature, 388-28,
882/887, (1997)7） 松田道行: FRET イメージング技術がもたらす生命科学研究の革新, バイオテクノロジージャーナル, 6-1, 66/73, (2006)8） 寺井, 松田:FACS による蛍光共鳴エネルギー移動（FRET）を利用した分子プローブの活性測定, BD FACSTM Review, 3, (2005)
9） Annalee W Nguyen & Patrick S Daugherty: Evolutionary
optimization of fluorescent proteins for intracellular FRET,
Nature Biotechnology, 23-3, 355/360, (2005)
10） 木下, 御橋: 蛍光測定, 学会出版センター, 2/7, (1983)
11） Selvin P. R.: Fluorescence Resonance Energy Transfer,
Methods in Enzymology, 246, 300/334, (1995)
12） 木村, 土井, 森, 弓井: コンクリート床版検査用3 次元映像化レーダの開発, 三井造船技報, 174, 38/44, (2001)
13） Karasawa S., Araki T., Yamamoto-Hino M & Miyawaki A.: A
green-emitting fluorescent protein from Galaxeidae coral andits monomeric version for use in fluorescent labeling, J. Biol.
Chem., 278, 34167/34171, (2003)
14） Karasawa S., Araki T., Nagai T., Mizuno H.& Miyawaki A.:
Cyan-emitting and orange-emitting fluorescent proteins as adonor/acceptor pair for fluorescence resonance energy transfer,
Biochem. J. 381, 307/312, (2004)
15） Mochizuki N., Yamashita S., Kurokawa K., Ohba Y., Nagai
T., Miyawaki A. & Matsuda M.: Spatio-temporal images ofgrowth-factor-induced activation of Ras and Rap1, Nature,
411, 1065/1068, (2001)
16） 宮脇: 蛍光イメージング革命 第 25 回 FRET 定量ナビ（その１）,
細胞工学, 24-11, (2005)
17） Emilia Galperin, Vladislav V Verkhusha & Alexander
Sorkin: Three-chromophore FRET microscopy to analyze
multiprotein interactions in living cells, Nature Methods, 1-3,
209/217, (2004)

中 田 成 幸 （正会員）
1984 年 岡山大学工学部生産機械工学科卒業，
同年 三井造船(株)入社．玉野技術開発センタ
ー主管研究員， 機械力学，制御システム機器の開発に従事，日本機械学会，日本サイトメトリー学会会員．

林 弘 能1995 年 徳島大学大学院工学研究科電気電子工学専攻修了， 同年 三井造船(株)入社，
玉野技術開発センター 主任，光・電子応用機
器，情報処理システムの開発に従事．

星 島

一 輝
1993 年 徳島大学大学院工学研究科機械工学専攻修了， 同年 三井造船(株)入社， 玉野技術開発センター主任，信号処理，情報処理，制御システ
ム機器の開発に従事．

土 井 恭 二1980 年 東北大学工学部電気工学科卒業，
同年 三井造船(株)入社，玉野技術開発センタ
ー主管研究員, 高周波技術の研究開発に従事，
電子情報通信学会会員．

木 村 憲 明 （正会員）
1972年 大阪大学基礎工学部機械工学科卒業，
同年 三井造船(株)入社， 技術本部理事，
流体解析ソフトウエア，マイクロ波・レーザ・プラズ
マ機器の開発に従事， 応用物理学会会員，
工学博士．

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