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浦上財団研究報告書 Vol.14（2006）〈平成15年度〉

精密ろ過膜を自力で通り抜ける細菌活性松山東平（新潟大学大学院医歯学総合研究科）

1. は じ め に性を考えた。それを調べるべく，上下２つのチャンバーよりなる図１の装置を用意した。上部チャ

微生物を研究対象とする場合，単独菌株の純粋ンバーの底部は，孔径0.45μmのろ過膜よりなり，培養，また，その生理状態を再現性よく一定にし２つのチャンバー間で溶液や溶質の通り抜けが可やすい液体培養が，近代実験科学の主要な培養法能である。細菌は通過不能でバイオフィルム構成となっている。しかし，表面環境を好む微生物本細菌の移行はないだろうと想定した。上部チャン来のライフスタイルは，微生物がバラバラに浮遊バーに緑膿菌（   ）を接種している状態ではなく，様々な微生物が混合したし側面および底面にバイオフィルムを作らせ，下集団定住であろう。近年この微生物特有なライフ部チャンバーに拡散移行しているだろうシグナル

スタイルに目を向けた研究が始まっている。その物質を検索した。しかし，予測に反し，緑膿菌自一つがバイオフィルムという概念の提唱である。

体が検出された。同じ孔径のろ過膜で，加圧によ微生物が固体表面などの界面で寄り添い構築しるろ過をすると菌はろ液に検出されない。したがた集団生息状態を，我々はバイオフィルムと呼んって，この緑膿菌が，0.45μm孔径のろ過膜に捕捉でいる１）。バイオフィルムは，生態系で生物全体されるサイズであることに間違いはない。

や地球環境を支える貴重な存在である。産業や医図１の実験では，加圧処理はしていない。ま療の世界で多用されている種々の人工物もバイオた，数秒で済む加圧ろ過法とは違い，２日間培養フィルムの落ち着き先である。それ故，生産ライしての結果である。この長い期間に細菌が自力でンや製品の不良化，カテーテル等による院内感染を招く厄介な存在と見なされている２）。浮遊状態の微生物と比べバイオフィルムは，集団として抗微生物剤に強い抵抗性を示し，対処し難い汚染源とされている。バイオフィルムは液体との界面で形成されるが，その液体中に浮遊している細菌も，バイオフィルム程ではないが抗生物質処理後に生残している３）。菌濃度が高い状態では，菌相互のコミュニケーションが活発になりシグナル物質が産生され菌の生理状態も変化する４）。バイオフィルムを浸す液体中にもそのシグナル物質が放出され，浮遊菌に作用し薬剤耐性にしている可能

図１

ろ過膜を介した２チャンバー装置。上部に，菌を接種しバイオフィルムを形成させる。下部は，液体培地のみ，菌は接種していない。

精密ろ過膜を自力で通り抜ける細菌活性29

ろ過膜をゆっくりと通り抜けた可能性を考え，以結果のところで明記する。実験によっては，変異下に述べるような実験を行った。

株を分離し使用した。その分子遺伝学的手法，お2.

実験方法

よび，使用培地や培養法，運動能検査法は発表済
みの専門誌５，６） に詳記した。

1.5％寒天培地表面に滅菌したろ過膜を置き，そ走査型電子顕微鏡による観察では，試料固定はの菌液10 μをの中央部に限局させ約108 CFU/m

通常通り行った。有機溶媒（エタノール等）はセスポット接種し培養する（図２A）。時間をおいてルロース混合エステル製ろ過膜を溶解するので使（最低６時間ごと）ろ過膜を除去し，その後培地用していない。臨界点乾燥は行わず，真空乾燥処

面のスポット直下部位に菌の生育が見られるかを理の試料を観察した。

調べ，菌のろ過膜通り抜け能を判定した（図２3. 結果と考察B）。通り抜け時間は，最短のものをこの報告では記した。実験は最低３回行った。使用したろ過

3. 1 細菌のろ過膜通り抜け能の確認

膜の無傷性は，ろ過膜メーカー（Millipore Corp.）

ろ過膜を細菌が通り抜けていることを調べるの

記載のバブルポイント法および，使用済みろ過膜に，図２のような，単純な実験条件を設定した。の加圧ろ過試験で調べた。多種の菌種，菌株を使ろ過装置といった器具類は使用していない。それ用したがその菌種株名，また，使用したろ過膜

故，膜とは無関係な部位でのリークの可能性はな（MF-MilliporeとADVANTEC）の孔径などは，い。
図２を見ると，菌液をスポット接種した部位に対応する培地面にだけ菌生育が認められる。但し，接種ろ過膜を数時間以上培地上に置いておかなければならない。膜の無傷性はバブルポイント法等で確認した。菌液が拡がって膜の縁から膜の下面に回り込んだ可能性や，膜にある傷を通って培地面に菌が移行した可能性は，生育菌の分布か菌接種部らも否定できる。培地面での菌生育がリング状なのは，ろ過膜上にスポットした半球状の菌液の辺縁部に菌が集積し，リング状に菌濃度が高くなる現象の反映と思われる。膜上面で，菌がリング上に分布していることは，膜をクリスタル・バイオレットで染める方法や走査型電子顕微鏡観察で確環状に接種菌の生育が見られた
図２

細菌のろ過膜通り抜け能を調べる方法。寒天培地表面にろ過膜を置き，その上に菌液をスポットする（A）。一定時間ごとにろ過膜を除去し，残った平板を培養する。スポット直下部位だけに菌が生育してきたら（B），通り抜け陽性と判定する。
陽性判定となった膜の除去までの期間を通り抜け所要時間とした。

認してある。菌濃度が高いと通り抜けが早く見られるのでリング形成と話が合う。培地面に生育の菌が，スポットした菌と同一であり，後で混入した雑菌でないことは，接種菌株ごとに確認した。
細菌が精密ろ過膜を通り抜けていることは，間違いない事実である。但し，通り抜けには時間を浦上財団研究報告書 Vol.14（2006）30

表１

各種細菌のろ過膜通り抜け活性
通り抜け最短時間（hr）

菌種
菌株名

Pseudomonas aeruginosa
PAO1 T
PAO1 C
ATCC 27853
Serratia marcescens
274
NS 38
NS 45
Listeria monocytogenes
EGD
CL101
CL102
F4
Listeria innocua
93/65
Escherichia coli
ATCC 25922
Klebsiella pneumoniae
Fu1
Fu1-m21
Bacillus subtilis
ATCC 21331
Staphylococcus aureus
ATCC 25923
Brevundimonas diminuta
NBRC 14213
Candida albicans
NBRC 1385

孔径（MF-Millipore）

培養温度

孔径（ADVANTEC）

0.45 µm

0.3 µm0.22 µm

0.2 µm

30℃
30℃
30℃

612102448
2472
> 216
72

168
> 216
ND

30℃
30℃30℃

12142472
96
96

192
> 96
ND

192
ND
ND

30℃
30℃
30℃
30℃

1830
24
42

54
48
48
72

132
132
120
144

120
132
120
14430℃

1830

96

12030℃

48> 96

ND

ND

30℃
30℃

> 96
96> 96
> 96

ND
ND

ND
ND

37℃

108

ND

ND

ND

37℃

132

ND

ND

ND

30℃

2448> 96

ND

37℃

72> 96

ND

ND

備考

緑膿菌
Twitching motility 陽性
Twitching motility 陰性
薬剤感受性試験管理用株
霊菌（セラチア）
赤色色素産生ATCC由来株
色素産生臨床分離株
色素非産生臨床分離株,リステリア菌
病原性解析株
臨床分離株
臨床分離株
4b血清型株
リステリア属菌
非病原性
大腸菌
薬剤感受性試験管理用株
肺炎桿菌（大型菌）
莢膜あり
莢膜欠損変異株
枯草菌（大型桿菌）
ブドウ球菌
薬剤感受性試験管理用株
精密ろ過膜検定用
ATCC 19146 株由来
真菌（２形性発育の酵母）
コーンミール培地使用

ND, 調べていない。
> --, --時間以内に通り抜けが認められない。

要し，細菌のサイズ，ろ過膜の孔径によってその成否は変わってくる。
3. 2 ろ過膜孔径と細菌の通り抜け能
孔径0.1μmのろ過膜を通り抜けた細菌種はなかった。通り抜け限界条件と判断した。表１に見られるよう，ろ過膜孔径が0.45μmから0.2μmへと小さくなるほど，通り抜けに時間を要している。
細菌の通り抜けが細菌の能力に依存した生物学的現象であることを示唆している。ろ過膜の厚さは，150μmほどあり，細隙が連なったその断面

図３ 孔径0.3μm厚さ150μmのMF-Milliporeろ過膜断面, 走査型電子顕微鏡写真。

（図３）を見ると，この道のりをサイズ１μm程の細菌が自力で通り抜けるのには，相応の時間をに示した菌種もこの範囲内である。球菌なら直要すると思われる。

径 1μmほどである。それなら，0.45−0.2μmと表3. 3 細菌がろ過膜通り抜けている実像示されているろ過膜をこれらの菌がなぜ通り抜け桿菌の標準的な大きさは，長軸の長さが1.0−られるのであろうか。この疑問は，走査型電子顕3.0μmほど，横幅が0.5−1.0μmほどである。表１

微鏡でろ過膜とそれを通り抜けつつある細菌（図精密ろ過膜を自力で通り抜ける細菌活性31

図４ リステリア菌EGD 株（矢印）のろ過膜通り抜け走査型電子顕微鏡写真。
A，接種面；B，ろ過膜内部；C，出口面；D，無接種のろ過膜表面。A，B，CはADVANTEC社製で孔径0.2μmろ過膜。DはMillipore社製で孔径0.45μmろ過膜。スケールバーは，1.0μmを表示。

４ではリステリア菌［
EGD株］）を調べることで，氷解した。
ろ過膜の中央部断面を見ると，細菌は確かにろ過膜の細隙中に侵入しており（図４B），出口面かどない。但し，病院で使われる点滴ラインの途中にろ過膜を入れているものは，長時間に及ぶろ過なので注意が必要であろう７）。産業界で使用の連続運転大型装置でも同様である。

らは，抜け出ようとしている姿（図４C）も認め

製品表示の孔径は，形態学的計測によるものでられる。それらの菌は，接種面に見られる細隙侵はなく，加圧ろ過法を前提にした水銀ポロシメト入前の細菌（図４A）と，サイズ的には大差がなリ法によるもので，圧計測から得られた計算推測

い。菌体のダウンサイズ化が起っていない所見で値なのである。我々がそうだったよう，一般に誤ある。見て欲しいのは，スケールバーとの比較で解があるので，明記しておく。

ある。１μmのスケールバーが示されているが，0.2μm（図４A−C）と0.45μm（図４D）と製品3. 4 細隙構造通り抜けを可能にする細菌の自力とは表示のあるろ過膜に，直径１μmより大きな細隙

図３に示されている150μmにわたる細隙を細が見られる。細菌がこの間隙を通り抜けられるの菌はどのような推力を駆動して通り抜けているのは当然である。加圧ろ過法では，加圧による液流だろう。自然界には，動植物の組織や土壌のなかに乗った細菌を150μmの厚さの膜に押し込むわに似たような構造の環境が多種ある（図５に，ソけで，無数にある細隙に捕捉されてしまい，加圧ーセージ造りで使われている羊小腸粘膜下基底層ろ過の数秒間でろ液に細菌が出る可能性はほとんの例を示す）。したがって，我々が見いだした現浦上財団研究報告書 Vol.14（2006）

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Ａ

Ｃ

リステリア接種ＤＢ

図５

羊小腸粘膜基底層を使ったリステリア菌通り抜け実験。A，Bは基底層走査型電子顕微鏡写真，AとBのスケールバーは，それぞれ100μmと10μm。Cは膜状の基底層に菌を接種した状態。Dでは，基底層を通り抜けたリステリア菌が生育してきている。

象は，ろ過膜の問題に留まらない。感染菌の組織侵入機構とも関連してくる。細隙サイズやその厚さが規格化されているろ過膜の使用は，微生物の細隙侵入能を解析する格好の実験系として有用である。
細菌の中には，液体中や濡れた固体表面を動き回れるものがある。それら固有運動能のある細菌を使い，運動の担い手である鞭毛，線毛を欠損させた変異株では通り抜けがどうなるかを調べた。
図６に，リステリア菌の親株 EGDe（A），その鞭毛喪失変異株（B，C）と復帰株（D）の鞭毛染色像を示す。これらの菌株がろ過膜を通り抜けるの図６ レイフソン鞭毛染色で見たリステリア菌。A，EGDe野生株；
B，EGDe鞭毛欠損変異株（Δ）；C，EGDe鞭毛欠損変異株にコントロールプラスミド（pCON1）を入れた株；D，EGDe鞭毛欠損変異株に遺伝子を荷うpCON1を入れた復帰株。に違いがあるのであろうか。
（１） 鞭毛の働き鞭毛の有無は，通り抜け毛を持つ菌株が速くに通り抜けている。しかし，時間に大きな影響を及ぼす。食品媒介で重篤な感0.22μm孔径のろ過膜では，長時間要する通り抜染症を起こすリステリア菌と院内感染症で知られけに違いがなくなっている。鞭毛は有用であるる霊菌（  ）での解析例を表２にが，孔径が0.22μmと小さい細隙環境では，鞭毛を示す。両菌は，図６に見るような螺旋状の周毛を伸ばしての回転が不都合のようで，有効に機能出持っておりその周毛を束ねて回転させ移動する。

来ていない結果になっている。

両菌とも，0.45μm孔径のろ過膜通り抜けでは，鞭（２） 線毛の働き

緑膿菌は，type IV線毛と精密ろ過膜を自力で通り抜ける細菌活性表２33

細菌鞭毛の有無とろ過膜通り抜け活性菌種

通り抜け最短時間（hr）

菌株名

孔径 0.45 µm

Listeria monocytogenes
EGDe（野生株）（ A）*
DH−1042（鞭毛欠損変異株）（ B）
DH−1042/pCON1FlaA（鞭毛回復株）（ D）
DH−1042/pCON1（コントロールプラスミド挿入株）（ C）
Serratia marcescens
274（野生株）
274−AB1（鞭毛欠損株）
274−AB1/pTH18krhag（鞭毛回復株）
274−AB1/pTH18kr（コントロールプラスミド挿入株）

0.22 µm

24782478120156144168

12132
24168

192
192
> 216
> 216

全て30°C 培養，ろ過膜は，MF-Millipore*, 図６, A, B, C, D を参照> --, --時間以内に通り抜けが認められない。

呼ばれる鞭毛より細い運動装置を持っている。回り抜けるのに，線毛が働いていると判断した。

転させて働くのではなく，伸ばしてその先端を何（３） その他の自力能 表１や表２には，本かに付着させ，その線毛を短くすることで菌が前来鞭毛やtype IV線毛を持っていない菌（

進する 。プラスチックシャーレに固めた寒天培や  ）や，突然変異でそれらを欠損し地とプラスチック面の間を菌が拡がる活性た菌株も通り抜け陽性と記されている。但し，通（twitching motility）でその働きを見ることが出り抜けに要する時間は長い。増殖する菌は，時間来 る（図 ７）。左（１）がtwitching motility陽 性を追ってその集団サイズが増大し，肉眼で見れるの緑膿菌のPAO1 T株。右（２）が陰性のPAO1コロニーと呼ばれるものになる。それが，細隙のC 株である。この両菌をそれぞれ0.22μm孔径のなかでも進行し，集団圧の力でろ過膜通り抜けがろ過膜上にスポット接種し96時間後にろ過膜を除起っていると，考えられる。単純な原理だが，増去すると，下にあった培地面に特徴あるリング状殖だけをしない変異株を用意しなければならず，生育がでてくる。しかし，それが認められるのその実証は，かえって難しい。

８）

は，twitching motility陽性のPAO1 T株だけである（図８）。0.22μm孔径といった小さな細隙を通図７ 緑膿菌PAO1株のtwitching motility. PAO1 T株（1）とPAO1C株（2）を，1.0％LB寒天に穿刺接種し，24時間培養後（A），寒天培地を除去し，残ったプラスチックシャーレをクリスタルバイオレット処理し菌を染色した（B）。紫に染まって見える部位でtwitching motilityが陽性である。

図８

緑膿菌PAO1 T株（1）とPAO1 C株（2）で比較したろ過膜（孔 径0.22μm，MF-Millipore）通 り 抜 け 能。Twitchingmotility陽性のPAO1 T株が陽性である。

浦上財団研究報告書 Vol.14（2006）34

4. お わ り に

最後に，浦上食品・食文化振興財団による平成15年度研究助成が，本研究遂行への大きな支えで浮遊菌とバイオフィルムとの関係を調べる仕事した。厚くお礼申し上げます。

が契機となって，細隙構造への細菌の侵入能を明らかにすることができた。なお，バイオフィルムと共存の浮遊菌が薬剤抵抗性を示した理由は，共存菌が抵抗性になったというよりは，バイオフィ

文献１） 松山東平．
「バイオフィルムの生物学」，Microbes andEnvironments，14，163-172，1999．
２） 松山東平．
「医学分野におけるバイオフィルム」，『バイルムを浸す液体中の抗生剤力価が低下したためでオフィルム入門あった。バイオフィルムが抗生剤を吸着し薬剤濃技連，2005，pp. 145-179．

度が下がったか，抗生剤の分解・不活化が起ったのであろう。また，本研究の遂行中，緑膿菌を嫌

３） 長沼―環境の世紀の新しい微生物像―』，日科

孝多ら．バイオフィルム及び共存浮遊菌の薬剤感受性変動，日本細菌学雑誌，56，339，2001．
４） 紙野圭．「バイオフィルムと微生物間情報伝達」，『バ気培養し，この菌集団が炭酸ガス依存性に薄く伸イオフィルム入門び拡がる活性を示すことを見いだした。不思議な科技連，2005，pp. 113-144．

細菌能力の発見であり，その機構解明に現在取り―環境の世紀の新しい微生物像―』，日５） H. Hasegawa, et al. Membrane filter（pore size, 0.22-0.45μm; thickness, 150μm）passing-through activity of組んでいる。

    and other bacterial species withindigenous infiltration ability. FEMS Microbiol. Lett. 223,

謝辞

本研究は，本学大学院自然科学研究科の長谷川

41-46, 2003.
６） K. Nakazawa, et al. Factors influencing the ability of








to pass through a membrane filter

裕之，中澤健太郎，谷川太一朗院生らの実験研究

by active infiltration. Appl. Environ. Microbiol. 71, 7571-によっている。共同研究者（本学教官仲川洋治，7574, 2005.

寺尾通徳）を代表し，謝意を表したい。菌株は，Drs. D. E. Higgins, J. Kato, E. Yabuuchi, and R. M.

７） S. Rusmin, et al., Consequences of microbial contamination during extended intravenous therapy using inlinefilters. Am. J. Hosp. Pharm. 32, 373-377, 1975.

Harsheyより分与を受けた。羊腸管の基底膜は，

８） J. M. Skerker and H. C. Berg, Direct observation of

本学教官西海理之氏より頂いた。ポロシメトリー

extension and retraction of type IV pili. Proc. Natl. Acad.

に関しては，北越製紙株式会社の下越典彦氏にご教示頂いた。諸氏のご協力に深謝する。

Sci. USA, 98. 6901-6904, 2001.

Membrane filter pass-through by bacteria with indigenous infiltration ability

35Membrane filter pass-through by bacteria with indigenous infiltration ability
Tohey Matsuyama（Niigata University Graduate School of Medical and Dental Sciences）

Bacterial infiltration activity was demonstrated by inoculation of bacteria on a membranefilter placed on a solid agar medium. These membrane filters（pore size, 0.45-0.2μm; thickness
150-110μm）were usable for preparation of sterile solution by the ordinary pressure filtration
method. However, bacteria were able to infiltrate reticulate structure of the membranetexture and pass through these filters during a long time incubation（6-120hr）. Ten speciesof microbes examined so far（e.g.,      ）demonstrated distinct pass-through activity. Time required for passthrough became longer when pore size was smaller reflecting presumable difficulty ofbacterial translocation through a narrower pathway. Scanning electron microscopic
examination of the membrane filter pass-through by bacteria visualized infiltrating bacteria in
the reticulate structure of the membrane. No remarkable changes in the size of bacterial cells
were recognized. It is noteworthy that void spaces in the reticulate structure of themembrane filter are larger than the diameter of the bacterial cell body. In other words, thepore size described by the manufacturers is not a morphologically determined size, rather anestimated value from the pressure data in mercury porosimetry.
By mutational studies using isogenic mutants, flagella-dependent motility of  and   , and type IV pili-dependent twitching motility of    were shown as an important driving force for membrane filter passthrough activity.

Since non-flagellated and non-pilated bacteria（e.g., ）also

demonstrated filter pass-through activity（although it was slower）, expansive pressure
generated by the growing bacterial population was indicated as the basic driving force ofinfiltration.