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日本植物学会シンポジウム「植物科学が拓く進化細胞生物学」
オーガナイザー村田
基礎生物学研究所〒444-8585

隆
生物進化研究部門

岡崎市明大寺町字西郷中３８上田貴志

東京大学大学院理学研究科〒113-0033

東京都文京区本郷 7-3-1

Evolutionary cell biology pioneered by plant research
Key words: cell biology, cytoskeleton, evolution, membrane traffic, symbiosis
Takashi Murata
National Institute for Basic Biology
Nishigonaka 38, Okazaki, Aichi, 444-8585 Japan
Takashi Ueda
Graduate School of Biological Scienecs, The University of Tokyo
Hongo 7-3-1, Bunkyo-ku, Tokyo, 113-0033 Japan

本総説集は、日本植物学会第 76 回大会（2012 年 9 月）に開催されたシンポジウム「植物科学が拓く進化細胞生物学」の内容をもとに、関連する総説を取りまとめたものです。
細胞の構造と機能を探る細胞生物学においては、動物細胞や酵母を用いた研究が先導的な役割を果たしてきました。そのため、酵母と動物細胞に共通して存在する機構は、真核生物に一般的なものであると思われがちでした。しかしながら、２１世紀になって生物のゲノム情報が増えるにつれ、動物と酵母が属する系統（Opisthokonta）が、真核生物の一つのグループを構成するに過ぎないことが明らかになってきました。一方緑色植物は、真核生物の系統樹において、動物や酵母とは全く別の系統に属することが明らかになりました。このため、緑色植物の細胞を解析・理解し、得られた知見を動物や酵母を含む他の生物の研究から得ら

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れた知見と比較することにより、真核生物の細胞現象に通底する共通性と各生物が独自に獲得した多様性を理解することが出来ると考えられます。
植物独自の構造である葉緑体や細胞壁の解析、様々な植物ホルモンのはたらきや発生現象の研究においても、注目する形質の起源や変遷を探ることが可能になりつつあります。紅藻のシゾンに加え、陸上植物の系統の基部に位置するセン類ヒメツリガネゴケや小葉類イヌカ
タヒバのゲノムが解読され、ゲノム情報が利用可能になりました。また、タイ類ゼニゴケのモデル植物化も進んでいます。
このような展開の中で、植物細胞の解析が分子レベルで進んだ結果、細胞の生存を支える
基本的な仕組みである膜交通やオルガネラ分裂などの過程においても、植物細胞が実は「進化」していることがわかってきました。シンポジウムにおいては、植物細胞を材料としてユ
ニークな研究を行っている研究者に講演をお願いしました。本総説を読んでこの分野に興味を持っていただき、新しく研究を始める際のヒントとしていただけますと幸いです。

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膜交通経路の多様性獲得機構から見た植物のポストゴルジ輸送網
藤本優 1,2・上田貴志 1,3
1. 東京大学大学院理学系研究科生物科学専攻〒113-0033 東京都文京区本郷 7-3-1
2. 東京大学大学院農学生命科学研究科生産環境生物学専攻〒113-8657 東京都文京区弥生 1-1-1
3. 科学技術振興機構 さきがけ
〒332-0012 埼玉県川口市本町 4-1-8
Molecular basis underlying the diversification of post-Golgi traffic in plants
Key words: Coat protein complex, Dynamin-related GTPase, Rab GTPase, tether, SNARE
Masaru Fujimoto1,2 & Takashi Ueda1,3
1
Department of Biological Sciences, Graduate School of Science, The University ofTokyo, 7-3-1 Hongo, Bunkyo-ku, Tokyo, 113-0033, Japan2
Department of agricultural and environmental biology, Graduate School of Agriculturaland Life Sciences, The University of Tokyo, 1-1-1 Yayoi, Bunkyo-ku, Tokyo, 113-8657,
Japan
3
Japan Science and Technology Agency (JST), PRESTO, 4-1-8 Honcho Kawaguchi,
Saitama, 332-0012, Japan
１．はじめに真核生物の細胞内には様々な細胞小器官（オルガネラ）が存在し，それらはそれぞれ異なるタンパク
質や脂質から構成されている。これらのオルガネラが，細胞の状態に応じてその機能を発揮したり，その数を変化させたりするためには，それぞれの構成タンパク質や脂質の配置の，厳密な時空間的制御が必要である。小胞体，ゴルジ体，トランスゴルジネットワーク（TGN），エンドソーム，液胞， 図１ 二つのオルガネラ間を結ぶ膜交通経路とその制御因子の模式図。
細胞膜などの単膜系オルガネラ
間においては，小胞や小管を介した物質輸送システム，いわゆる“膜交通”が，この制御に
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おいて重要な役割を果たしている。2 つのオルガネラ間を結ぶ輸送の基本的な仕組みを，図 1に示した。まず，供与側のオルガネラから小胞や小管状の輸送中間体が形成される。その後，
輸送中間体は標的オルガネラへと輸送され，繋留のステップを経て膜融合が実行される。真核生物の複雑な膜交通経路網は，多様な組み合わせのオルガネラをこのような輸送経路がネットワーク状に結びつけることにより成り立っている。
各々の膜交通経路では，被覆複合体や RAB GTPase，SNARE などの進化的に保存された分子が機能している (Bonifacino & Glick 2004)。これらの分子は，進化の過程でそれぞれ高度に多様化しており，膜交通経路ごとに異なる組み合わせの被覆複合体，Rab GTPase，およびSNARE のセットが機能していることが知られている。各オルガネラには，それぞれ固有のRab GTPase や SNARE が分布していることから，これら分子の局在が，オルガネラのアイデ
ンティティーを決定づけているとも解釈されている。
古細菌に似た性質を持っていたとされる真核生物の共通祖先
が，現存の真核生物へと進化する過程では，単膜系オルガネラの分化とそれらを結ぶ膜交通経路の新生が繰り返されることにより，
細胞内膜系が次第に複雑化したものと考えられている (Dacks &Field 2007)。多くのオルガネラ間
輸送経路において，前述したような相同な制御因子群が機能しているという事実は，それらをコードする遺伝子の数の増加と，それ 図２ 膜交通制御因子の数の増加とその機能分化に伴う膜交通経路のに続く変異の蓄積による機能の 多様化の模式図。Dacks & Field 2007 より改変して引用。
多様化が，膜交通網の多様化の前提条件であったことを示唆している（図２）(Dacks & Field
2007)。さらに，近年の比較ゲノム解析の結果から，これらの膜交通制御因子の一部が，真核生物の系統ごとに特異的な多様化を果たしていることも明らかとなってきた。このことは，生物の系統ごとに，独自の新規膜交通経路網が開拓されてきたことを示している。そこで本稿では，植物のポストゴルジ輸送網に特異的な制御因子群に注目し，その機能を紹介すると
ともに，それぞれの進化や高次機能との関連について考察したい。

２．被覆複合体
オルガネラ間の輸送は，供与オルガネラからの輸送中間体（輸送小胞や小管）の形成に始まる。COPII，COPI，クラスリン被覆などの被覆複合体と呼ばれる分子群が，このプロセスにおいて積荷タンパク質の濃縮や膜の変形を担っている (Schledzewski et al. 1999, Singh &Gupta 2004, Elde et al. 2005, Dacks & Field 2007)。これらの被覆複合体は，真核生物の系統間で広く保存されており，さらには核膜孔複合体と相同である可能性も指摘されている (Devos etM. Fujimoto & T. Ueda-2

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al. 2004)。このうち，COPII
は小胞体における輸送小胞の形成を，COPI はゴルジ体における輸送中間体の形成を制御している。ポストゴル
ジ輸送経路においては，主にクラスリン被覆がはたらいている。クラスリン被覆は，湾曲した膜構造の安定化に寄与するクラスリン格子と，クラスリンと結合するとともに膜上の積荷タンパク質やイ 図３ シロイヌナズナ$17+タンパク質の細胞内局在の一例。(A), (B)はそ
れぞれ根の細胞における共焦点レーザー顕微鏡像，および全反射照明蛍光

ノシトールリン脂質とも結合 顕微鏡像。ANTH タンパク質（緑）が，クラスリン（赤）と細胞膜上で共し，両者を結びつける機能を 局在する様子が観察される。スケールバーは 5 Pm。
持つアダプタータンパク質から形成されている (Brodsky 2012)。アダプタータンパク質には多様な分子種が存在し，それぞれがポストゴルジ輸送網の異なる経路で機能している (Owenet al. 2004)。その中で最も解析が進んでいるものの一つが，AP 複合体 (Adaptor Protein 複合体)である。AP 複合体は，二つの大サブユニット（DJGH]とE）と中小の各サブユニット（PとV）からなるヘテロ四量体であり，これまでに AP-1 から AP-5 までの五種類の複合体が同定されている(Boehm & Bonifacino 2002, Hirst et al. 2011)。これらの AP 複合体は，それぞれ細胞
膜や TGN，エンドソーム，液胞・リソソームといったオルガネラを結ぶ異なる輸送経路で機能するものと考えられている (Boehm & Bonifacino 2002, Dell'Angelica 2009, Niihama et al.
2009, Burgos et al. 2010, Feraru et al. 2010, Jackson et al. 2010, Hirst et al. 2011)。
近年，AP 複合体のEサブユニットに類似した構造を持ち，クラスリン結合能を持つ TPLATEと呼ばれる分子が陸上植物に存在することが明らかにされた (Van Damme et al. 2006)．
TPLATE は植物に特有の分子であることから，植物がその進化の過程で固有のアダプタータ
ンパク質複合体を獲得した可能性が示唆される。TPLATE は，細胞板の伸長領域や，細胞板と細胞膜の予定融合部位に特異的に局在し，細胞質分裂時のクラスリン依存性エンドサイトーシスに関与するものと推測されている (Van Damme et al. 2011)。今後，この TPLATE を含む
アダプター複合体の構成因子や，それらが認識する積荷タンパク質の同定を通じ，その分子機能と生理的役割がさらに明らかになるものと期待される。細胞質分裂を制御する SNARE
である SYP111/KNOLLE は，その細胞板への特異的な局所化がクラスリン依存性エンドサイ
トーシスに依存することが示されており (Segui-Simarro et al. 2004, Boutte et al. 2010)，TPLATE
複合体に認識される積荷タンパク質の有力な候補と目されている。また，陸上植物においては，イノシトールリン脂質への結合能を持つ ANTH（AP180 N-Terminal Homology）ドメインを有するタイプのアダプタータンパク質（図３）が，他の生物種と比較して著しく多様化している (De Craene et al. 2012)。その分子機能と生理的役割の解明も，植物のクラスリン依存性エンドサイトーシスの特徴を明らかにする上での重要な課題である。
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３．ダイナミン様タンパク質
輸送小胞や小管の形成が完了するためには，出芽した膜構造を供与オルガネラから切り離す必要がある。ポストゴルジ膜交通経路においては，ダイナミン様タンパク質（ DRP:
Dynamin-Related Protein）と呼ばれる GTP 加水分解酵素がしばしばその役割を担う(Praefcke &McMahon 2004, Chanez et al. 2006)。輸送小胞形成におけるダイナミン様タンパク質の作動メカ
ニズムについては，動物細胞のエンドサイトーシス経路において，クラスリン被覆小胞形成の際に機能する Dynamin の研究が最もよく進んでいる (Sever 2002)。現在は，Dynamin がク
ラスリン被覆ピットの根元にリング状もしくは螺旋状に重合し，GTP の加水分解によるエネ
ルギーを利用した構造変化をおこすことにより膜をくびり切る，というモデルが広く受け入れられている (Schmid & Frolov 2011)。しかしながら，この Dynamin の生体内での振る舞いについてはほとんど明らかにされておらず，Dynamin が形成する構造の形状やその重合様式なども不明のままである。Dynamin を含めたダイナミン様タンパク質の in vivo における動態や機能について，今後のさらなる解析が待たれる。
膜交通における機能に加え，ダイナミン様タンパク質は，ミトコンドリア，ペルオキシソーム，および葉緑体の分裂や，小胞体の形態維持など，真核細胞内における膜の管状化や切断に広く関与することが明らかになっている (Praefcke & McMahon 2004, Hu et al. 2009)。また，
細胞内膜系を持たない複数の真正細菌から，脂質二重膜の形状を変化させる活性を持った類似の分子が発見されており (Low & Lowe 2006, Burmann et al. 2011)，ダイナミン様タンパク質の起源が原核生物由来である可能性も示唆されている。

図４ 陸上植物のエンドサイトーシス小胞形成機構。(A)は DRP1 および DRP2 の分子構造の模式図，(B)は現在考えられているその作動メカニズムを示す。陸上植物における細胞膜からのクラスリン被覆小胞形成時には，分子構造の異なる DRP1 と DRP2 が同一のリング状構造体に重合し膜の切断を実行するものと考えられる。

植物においても，ダイナミン様タンパク質の解析が進みつつある．近年のゲノム解析の結M. Fujimoto & T. Ueda-4

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果，陸上植物の多くは，DRP1 から DRP4，DRP5A，DRP5B という 6 グループのダイナミン
様タンパク質を有していることが明らかになってきた (Hong et al. 2003, Miyagishima et al.
2008)。このうち，細胞膜や細胞板におけるクラスリン被覆小胞形成には，緑色植物に共通して存在する DRP1 と，陸上植物にのみ存在する DRP2 が関与している (Kang et al. 2003, Collings
et al. 2008, Fujimoto et al. 2008, Konopka et al. 2008, Fujimoto et al. 2010, Taylor 2011)。興味深いことに，これら DRP1 と DRP2 の分子構造は，動物のダイナミンとはいくつかの点で異なっている（図４）。DRP1 は，小胞形成部位への局在化や膜上のイノシトールリン脂質への結合に必要なドメインを持っていない。一方，DRP2 はそれらのドメインを有しているものの，GTPの加水分解に必要なドメインに多数のアミノ酸置換を有している (Fujimoto et al. 2010)。DRP1と DRP2 は互いに結合し，さらに小胞形成部位において共局在することから，陸上植物においては，これらの分子が互いの機能を補完しつつ，協調して小胞形成に関わると推測される（図４）。このように分子構造の異なる複数種のダイナミン様タンパク質が，生体膜の切断において協調的に機能する例はこれまで報告がない。DRP1 と DRP2 のさらなる解析により，植物のダイナミン様タンパク質の独自の作用機序がさらに明らかになるものと期待される。
DRP1 の機能についてはこれまでにいくつかの報告があるが (Kang et al. 2003, Collings et al.
2008, Konopka et al. 2008)，DRP2 の機能解析は始まったばかりであり，今後の進展が待たれる。

４．Rab GTPase
供与オルガネラから出芽した輸送小胞は，その後標的オルガネラへと輸送され，繋留因子（tether）と呼ばれる分子群によって標的膜に繋留される。Rab GTPase は，Ras スーパーファ
ミリーに属する低分子量の GTPase で，GTP が結合した活性型と GDP が結合した不活性型をサイクルすることにより，分子スイッチとしてこの繋留のステップを制御する (Saito & Ueda
2009)。活性型の Rab GTPase は，それぞれが特定の繋留因子に作用してその集合を促し，輸送小胞と標的膜の結合を促進する。それぞれの膜交通経路では異なる Rab GTPase と繋留因子のセットが機能しており，これが複雑に入り組んだ膜交通経路網における膜融合の特異性を規定している一因であると考えられている。
近年の比較ゲノム解析の結果から，すべての真核生物の最近の共通祖先（共生によりミトコンドリアを獲得する直前の真核生物）には，少なくとも 20 種類の Rab GTPase のサブグル
ープが存在していたことが示唆されている (Elias et al. 2012, Klopper et al. 2012)。後述の通り，
これは現存する植物がもつ Rab GTPase のサブグループの数よりも多い。一方で，植物は進化の過程で新たな Rab GTPase を獲得していることも明らかとなっている。同様に，Rab GTPaseの二次的喪失と新規獲得は，他の真核生物の系統でも起こっていることが知られている。このことから，各系統の進化の過程において，祖先真核細胞に存在した Rab GTPase のうち，ある分子種は失われ，またあるものは増幅し，さらには新規 Rab GTPase の獲得などを経て，現存する真核生物の系統ごとに固有の Rab GTPase のセットを持つに至ったと考えられている(Dacks & Field 2007, Gurkan et al. 2007, Elias 2010)。この Rab GTPase の系統特異的な進化が，オルガネラと膜交通経路の系統特異的な多様化に，大きく影響してきたものと考えられている。
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上で触れた通り，植物のポストゴルジ輸送経路で機能する Rab GTPase は，動物や酵母，原虫などとは異なる際だった特徴をいくつか持っている．多くの陸上植物には，概ね 8 種類のRab GTPase のサブグループが存在しており，それらは動物の RAB1，RAB2，RAB5，RAB6，
RAB7，RAB8，RAB11，RAB18 とそれぞれ相同性を示す (Rutherford & Moore 2002, Vernoud etal. 2003)。中でも目を引くのが， RAB11/RABA グループ（RAB11 ホモログをシロイヌナズナ
では RABA と呼ぶ）の著しい多様化である。RAB11/RABA グループに属する分子は，ヒトでは 66 個の Rab GTPase うち 3 個，出芽酵母では 11 個のうち 2 個であるのに対し (Pereira-Leal& Seabra 2001, Stenmark & Olkkonen 2001)，シロイヌナズナにおいては，57 個の Rab GTPaseのうち 26 個が RABA グループに属している (Rutherford & Moore 2002)。
動物や出芽酵母の RAB11（出芽酵母では Ypt3）については，ゴルジ体やトランスゴルジネ
ットワーク（TGN），エンドソーム，細胞膜を結ぶポストゴルジ輸送経路の様々な局面で機能することが報告されている (Benli et al. 1996, Ullrich et al. 1996, Jedd et al. 1997, Chen et al. 1998,
Ortiz et al. 2002, Strickland & Burgess 2004, Furuta et al. 2007)。一方，シロイヌナズナの RABA
は，植物細胞において初期エンドソームとしての性質も兼ねる TGN とその周辺に局在し(Ueda et al. 1996, de Graaf et al. 2005, Chow et al. 2008, Szumlanski & Nielsen 2009)，TGN－細胞膜間の分泌経路，および TGN を経由するエンドサイトーシス経路で機能することが報告されている (Asaoka et al. 2012, Feraru et al. 2012, Choi et al. 2013)。さらに，RABA グループによって制御される輸送経路が，細胞質分裂や花粉管・根毛における先端成長 (Preuss et al. 2004, deGraaf et al. 2005, Chow et al. 2008, Szumlanski & Nielsen 2009)，病害や塩ストレス応答 (Asaoka
et al. 2012, Choi et al. 2013)，細胞壁の合成や分解 (Zainal et al. 1996, Lu et al. 2001, Abbal et al.
2008, Lycett 2008)といった，陸上植物の様々な高次生命現象の基盤として機能することが示されている。
陸 上 植 物 に お け る Rab
GTPase ファミリーの際だった特徴として，RAB5/RABF
グループの多様化も挙げられる。このグループに属する
分子は，真核生物の系統間で広く保存されており，動物細胞においては，エンドサイト
ーシス初期の多様なプロセスを制御することが明らかに さ れ て い るRodman&(SomselWandinger-Ness

2000, Benmerah 2004)。植物においても，動物の RAB5 と高い類似性を示す分子は非常

図５ ヒト RAB5c およびシロイヌナズナ RAB5 メンバーの一次構造。橙色の領域は GTP の結合や加水分解に必須のモチーフ，青緑や赤色の領域は保存型 RAB5 および ARA6 それぞれのエフェクタードメインを構成するアミノ酸配列を示す。ARA6 はカルボキシル末端が欠けており，アミノ末端に保存型 RAB5 にはない特徴的な脂質修飾部位が存在する。

に良く保存されており，単細胞性の紅藻であるシゾンを例外とし，これまでゲノムや EST の
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解析がなされた全ての植物種において，この RAB5 グループ（保存型 RAB5 と呼ぶ）の存在が確認されている (Matsuzaki et al. 2004, Elias et al. 2012)。シロイヌナズナゲノムには，保存型
RAB5 として，RHA1/RABF2a と ARA7/RABF2b がコードされており，いずれも多胞化したエンドソームに局在し(Haas et al. 2007)，液胞輸送経路とエンドサイトーシス経路の双方で機能している (Goh et al. 2007, Ebine et al. 2011)。これに加え，植物には特徴的な構造を持つ独自の
RAB5 グループ（ARA6 グループ）も存在する (Ueda et al. 2001, Ebine & Ueda 2009)。ARA6
グループは，全体としては RAB5 に最も高い類似性を示すが，アミノ末端に N-ミリストイル化とパルミトイル化を受けるなど，その構造が通常の RAB GTPase とは大きく異なっている（図５）。このグループに属する Rab GTPase は，コケ植物を含むこれまでに解析された全ての陸上植物に保存されており，最近は緑藻類の一部にもその存在が確認されている。一方，
ARA6 の明確なホモログは植物以外には存在しない。このことから，ARA6 グループは，植物が進化の過程で独自に獲得した分子種であると考えられる (Ebine et al. 2011, Elias et al. 2012)。
シロイヌナズナの ARA6/RABF1 は，保存型 RAB5 である ARA7 や RHA1 と同じ活性化因子（VPS9a）により活性化される (Goh et al. 2007)。しかしながら，ARA6 と保存型 RAB5 は，一部重複しつつも異なるエンドソーム集団に局在することから，両者が異なる機能をもつ可能性が示唆されていた (Ueda et al. 2004)。最近我々は，ARA6 と保存型 RAB5 の変異体が全く異なる表現型を示すことを明らかにし，両者の機能が明確に異なることを証明するとともに，
さまざまな輸送・オルガネラマーカーを用いた細胞生物学的解析から，ARA6 がエンドソー
ムから細胞膜への輸送経路で機能することを突き止めた (Ebine et al. 2011)。さらに，ARA6が機能する輸送経路が，植物の塩ストレス応答に関与していることも見いだした (Ebine et al.
2011, Ebine et al. 2012)。今後，ARA6 の機能発現メカニズムや陸上植物の各系統における ARA6
グループの機能解明により，植物の新規膜交通経路の獲得がどのようにおこり，植物のいかなる形質の進化に関わったのかが明らかになるものと期待される。

５．繋留因子複合体
前述の通り，Rab GTPase の制御下において，輸送小胞の標的膜への繋留を担う分子群を，繋留因子（tether）と呼ぶ。繋留因子には，単独で機能するものと複合体を形成してはたらくものが存在し，複合体で機能するものを特に繋留因子複合体（tethering complex）と呼ぶ。膜
交通の各経路で機能する繋留因子複合体がこれまでに多く同定されているが，異なる輸送経路で機能する繋留因子複合体の間には相同性が見いだされないことから，それぞれの繋留因子複合体は独自に進化した可能性が指摘されている (Koumandou et al. 2007)。このことは，Rab
GTPase や SNARE の遺伝子重複による数の増加とともに，起源の異なる複数の繋留因子複合体の獲得が，膜交通経路の多様化において重要な役割を担ったことを示唆している。
繋留因子複合体は，植物においても広く保存されている (Koumandou et al. 2007)．シロイヌ
ナズナにおいてはこれまでに，HOPS/CORVET 複合体が液胞輸送や液胞形態の維持に (Rojo et
al. 2001, Rojo et al. 2003, Niihama et al. 2009)，TRAPP 複合体が細胞板形成に (Thellmann et al.
2010)，
exocyst 複合体が花粉管や根毛の先端成長や細胞壁成分の分泌に (Cole et al. 2005, Synek
2006, Hala et al. 2008, Chong et al. 2010, Kulich et al. 2010, Pecenkova et al. 2011)，GARP 複合体がM. Fujimoto & T. Ueda-7

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花粉 管伸長や 温 度・ 浸透圧 ストレスへ の応答 に (Lobstein et al. 2004, Lee et al. 2006,
Guermonprez et al. 2008)，COG 複合体が細胞伸長や分裂組織の維持に (Ishikawa et al. 2008)それぞれ関与することが報告されている。これらの繋留因子複合体の中では，分泌小胞の細胞膜への繋留を担う exocyst 複合体 (Munson & Novick 2006)の機能が，陸上植物において特に多様化していることが示唆されている。
exocyst 複合体は，SEC3，SEC5，SEC6，SEC8，SEC10，SEC15，EXO70，EXO84 からなり，
中でも EXO70 ファミリーに属する分子種が，陸上植物において高度に多様化している。動物や出芽酵母では，EXO70 分子は一種類しか存在しないが，陸上植物においては，ヒメツリガ
ネゴケに 11 種類，シロイヌナズナに 23 種類，イネには 41 種類もの EXO70 メンバーが存在している (Elias et al. 2003, Synek et al. 2006, Chong et al. 2010)。これらの EXO70 メンバーのう
ち幾つかのものについては，TGN やエンドソームに局在することが示されていた (Chong et al.
2010)。しかしながら，その具体的な機能については長らく不明であった。最近，シロイヌナ
ズナの EXO70 メンバーの一つである EXO70E2 が，EXPO（Exocyst-Positive Organelles）と呼ばれる二重膜構造を持つ未知の球状オルガネラに局在し，細胞質成分を分泌するための陸上植物固有の輸送経路で機能することが示された (Wang et al. 2010)。今後，この EXO70 ファミリーのさらなる機能解析を通じ，陸上植物がその進化の過程で多様化させてきたエキソサイ
トーシス経路の機構と機能を明らかにできるものと期待される。

６．SNARE
輸送小胞が標的オルガネラ膜に繋留されると，一群の SNARE タンパク質のはたらきにより，これらの間で膜融合が起きる。SNARE タンパク質は，SNARE モチーフと呼ばれる
coiled-coil 領域のアミノ酸配列の特徴から，Qa-，Qb-，
Qc-，
R-SNARE の 4 種に大別される (Jahn& Scheller 2006, Wickner & Schekman 2008)。
Q-SNARE は主に標的オルガネラ膜上に，
R-SNAREは主に輸送小胞上に局在しており，3 種の Q-SNARE と R-SNARE がそれぞれ一つずつ集合して複合体を形成することにより，両者の膜の物理的な距離が縮まり，膜融合が引き起こされる（Qb-および Qc-SNARE については，SNARE モチーフを同一のタンパク質内に二つもつ
Qb+c-SNARE がその役割を担う場合もある）。
比較ゲノム解析の結果，真核生物の各系統において，体制の複雑さが増すに従い，SNARE
分子の数が増加する傾向があることが示されている。例えば植物においては，単細胞性の藻類であるシゾンとクラミドモナスのゲノムには，それぞれ 17 個，26 個の SNARE がコードされているのに対し，陸上多細胞植物であるヒメツリガネゴケやシロイヌナズナには，それぞれ 57 個，63 個の SNARE が存在する (Dacks & Doolittle 2002, Yoshizawa et al. 2006, Sanderfoot2007, Dacks et al. 2008)。このことからも，体制や生活環の複雑化が，膜交通経路の多様化と密接に関わっていることがうかがえる。
陸上植物のポストゴルジ輸送経路で機能する SNARE のうち，その多様化が特に著しいのが，細胞膜に局在する Qa-SNARE，SYP1 ファミリーである。陸上植物の SYP1 ファミリーは，その遺伝子が複数のイントロンをもつ SYP13 グループと，イントロンの数が一つ以下である
SYP12 グループに大別される (Sanderfoot 2007)。このうち，SYP13 グループは緑色植物に広M. Fujimoto & T. Ueda-8

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く保存されており，主に構成的な分泌に関与している。一方 SYP12 グループ（SYP11 もこのグループに含まれる）は，陸上植物のみに存在し，発生や環境応答に関わる特殊化した分泌経路で機能するものと考えられている。例えば，シロイヌナズナの SYP111/KNOLLE は，細胞板形成の際の膜融合を担うことが報告されており (Lukowitz et al. 1996, Lauber et al. 1997)，
SYP121/PEN1/SYR1 については，病原菌感染部位に向けた抵抗性関連物質の輸送への関与が示唆されている (Collins et al. 2003, Assaad et al. 2004)。
R-SNARE についても，進化の過程でその機能が大きく多様化してきたことがうかがえる。R-SNARE は， N 末端側に longin ドメインと呼ばれる
プロフィリン様の構造を持つ
longin と， longin ドメインを 図６ シロイヌナズナ VAMP7 の細胞内局在。図はそれぞれ GFP でラベルした各種シロイヌナズナ VAMP7 の根の細胞における共焦点レーザー顕微

もたない brevin に大別される 鏡像。VAMP71 は液胞膜，VAMP72 は TGN と細胞膜，VAMP727 はエンド
(Filippini et al. 2001)。longin が ソーム／液胞前区画に局在する。スケールバーは 10 Pm。全ての真核生物の系統に普遍的に保存されているのに対し，brevin は動物や菌類を含む系統
のみに存在する。このことから，brevin は動物や菌類を含む系統が進化の過程で独自に獲得した R-SNARE であると考えられる．植物の R-SANRE は longin のみからなっており，それらはさらに SEC22，YKT6，VAMP7 の 3 グループに分類される (Uemura et al. 2004, Sanderfoot2007)。これらの中では，VAMP7 に最も顕著な多様化が認められる (Sanderfoot 2007, Ebine &Ueda 2009)。脊椎動物では 1 個ないし数個の VAMP7 が分泌経路やエンドサイトーシス経路で機能しているのに対し (Chaineau et al. 2009)，シロイヌナズナには 12 個もの VAMP7 が存在する (Uemura et al. 2004, Sanderfoot 2007)。これらの VAMP7 分子は，液胞膜に局在しその膜融合を実行する VAMP71 と (Uemura et al. 2004)，細胞膜や TGN に局在し分泌経路や細胞板形成において機能する VAMP72 の２つのグループに分類される (Zhang et al. 2011) （図６）。
VAMP72 グループの中にはさらに，植物が進化の過程で独自に獲得した VAMP727 が含まれる (Ebine & Ueda 2009, Vedovato et al. 2009)． この VAMP727 の研究により，R-SNARE の機能
分化の仕組みが，徐々に明らかとなりつつある。
VAMP727 は，その longin ドメイン中に，酸性アミノ酸に富んだ特徴的な挿入配列を持つ（図６）。我々は，シロイヌナズナの VAMP727 が，エンドソームから液胞への輸送経路と，エン
ドソームから細胞膜への輸送経路の双方で機能していることを明らかにした(Ebine et al. 2008,
Ebine et al. 2011)。これらの輸送経路のうち，エンドソームから液胞への輸送には，保存型
RAB5 の機能が必須であり，RAB7 もこの経路で機能している。一方，植物特異的な RAB5である ARA6 は，エンドソームから細胞膜への輸送を制御している。植物特異的な膜交通制
御因子である ARA6 と VAMP727 が，同じ膜交通経路で機能しているという事実は，両者の獲得が，植物における新規膜交通経路の獲得につながったことを強く示唆している。Rab
GTPase や SNARE の多様化が，膜交通経路の多様化へとつながることを示す好例と言える。
VAMP727 は VAMP72 グループの一員であるが，分泌経路で機能する他の VAMP72 メンバ
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ーと異なり，エンドソームを中心とした輸送経路で機能している。我々は最近，この機能の多様化が，longin ドメイン中の酸性挿入配列の有無と関連していることを突き止めた（藤本ら，未発表）。では，この酸性挿入配列はどのようにして獲得されたのであろうか。VAMP727
様の R-SNARE は種子植物に広く保存されているが，ヒメツリガネゴケやイヌカタヒバには存在しない。このことから，VAMP72 分子への酸性配列の挿入は，シダ植物が分岐した後，種子植物の共通祖先において起こったものと考えられていた。しかし最近我々は，VAMP727
様の挿入配列を持つ VAMP72 分子が苔類ゼニゴケに存在することを見いだした．このことか
ら，植物の進化における VAMP727 様の R-SNARE は，これまで考えられていたよりも古い起
源をもつことが明らかとなった。今後，酸性挿入の獲得がいかにして VAMP72 の機能転換を引き起こしたのか，基部陸上植物では VAMP727 様の SNARE がどのような輸送経路で機能しているのかなどを明らかにすることにより，VAMP72 をモデルとした膜交通経路多様化のメカニズムが，さらに明らかになるものと期待される。

７．これから
その精緻なポストゴルジ輸送経路網を，植物はいかにして発達させてきたのであろうか。
比較ゲノム解析やモデル植物シロイヌナズナを用いた研究は，TPLATE や DRP1/2，ARA6，
VAMP727 といった新規膜交通制御因子の獲得と，ANTH や RAB11，EXO70，SYP1 といった
既存の膜交通制御因子の多様化とが，植物における膜交通経路の多様化に大きく関わっていることを明らかにした。しかしながら，植物特異的な分子の獲得がどのようにおこり，それがいかに新規膜交通経路の開拓につながったのか，既存因子の機能分化は，どのような分子
ネットワークの進化と関連しているのかなど，依然不明な点が多く残されている。これらの疑問の解決のため，植物固有のポストゴルジ膜交通網の分子機構と生理的役割を明らかにするためのさらなる研究が必要である。さらに，藻類やコケ，シダ，裸子植物など，多様な系
統に属する植物を用いた研究も，膜交通がたどった進化の歴史を再構築するためには有効であろう。今後の研究の展開に，是非とも注目していただきたい．

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S. Miyagishima - 2
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細胞骨格から見た植物細胞の進化村田 隆
基礎生物学研究所 生物進化研究部門
総合研究大学院大学 生命科学研究科 基礎生物学専攻〒444-8585 愛知県岡崎市明大寺町字西郷中３８
Evolution of cytoskeletons in green plants
Key words: cytoskeleton, microtubules, plant evolution
Takashi Murata
National Institute for Basic Biology
Department of Basic Biology, School of Life Sciences, Graduate School for Advanced Studies
Nishigonaka 38, Myodaiji, Okazaki, 444-8585 Japan
１．はじめに
陸上植物は単細胞の緑藻から進化した。多細胞で固着生活する生活様式の獲得に伴って、細胞運動や細胞内輸送に働くモータータンパク質も変化したと考えられる。また、陸上植物
は根、茎、葉の器官を持ち、その内部に様々な組織を分化させるようになった。器官や組織の分化は、細胞の不等分裂や極性伸長などの細胞内の空間制御が基盤となっている。モータ
ータンパク質以外の細胞骨格関連因子も、細胞内の空間制御を司るため、陸上植物の体制進化に伴って何らかの変化を起こしたことが予想される。
本稿では、植物の進化において、細胞骨格がどのように進化したかに焦点をあてる。

２．緑色植物の系統
細胞骨格の変化について議論する前に、緑色植物の系統についてふれておきたい。緑色植物の祖先は、２本の鞭毛を持ち、単細胞で遊泳する生物だったと考えられる。固着性で大型の細胞を持つ多細胞藻類はその後の進化の過程で出現した。緑色植物は緑藻類（Chlorophyta）とストレプトファイツ類（Streptophyta）の２つの系統に分けられる。緑藻類はクラミドモナ
スなどを含み、ストレプトファイツ類はミカヅキモ、シャジクモや陸上植物を含む。陸上植
物はコケ植物と維管束植物を含み、多くの植物研究者が研究する顕花植物（イネ、シロイヌ
ナズナ等）は維管束植物の中に含まれる（図１）。

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図１

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緑色植物の系統。左は緑色植物全体、右は陸上植物。多分岐（？印）の部分は、諸説あって確定していない部分。

３．鞭毛と中心体の喪失
ストレプトファイツ類の細胞に起こった大きな変化の一つは、鞭毛の喪失である。体細胞における鞭毛の喪失は陸上植物に加え、シャジクモや接合藻でもみられる。生殖細胞における鞭毛の喪失はいくつかの維管束植物（被子植物、裸子植物の一部）と接合藻で並行して起こった(Murata et al. 2007)。鞭毛による精子の遊泳は受精に欠かせない形質だが、被子植物の場合は花粉管による精細胞の輸送と花粉管破裂後の精細胞の移動、接合藻類の場合には接合によって代替されている。
鞭毛形成と中心体の存在は関連した性質である。動物（後生動物）の場合、中心体（centrosome）
は中央に１対の中心小体（centriole）を含み、その周囲に中心体辺縁物質（pericentriolar material）
が取り囲む。中心小体は鞭毛形成、中心体辺縁物質は細胞質微小管形成に働く。ほとんどの
場合、細胞は中心体を常に維持し、中心体中の中心小体を鋳型にして鞭毛を形成する。一方、
陸上植物の場合、コケ、シダなどは精子が鞭毛を持つが、体細胞は鞭毛も中心体も持たず、精子形成とともに鞭毛が新規に形成される(Renzaglia and Garbary 2001)。精子形成時には、まず精子の母細胞で中心小体に似た構造（ブレファロプラスト）が出現し、精子分化時にこの構造から鞭毛がつくられる。ブレファロプラストは細胞分裂時に紡錘体の極に位置するなど、中心体のような挙動をする(Doonan et al. 1986)ことから、コケ、シダなどの中心体と見なされている。
我々は、コケ植物蘚類ヒメツリガネゴケ（Physcomitrella patens）、維管束植物小葉類イヌカ
タヒバ（Selaginella moellendorffii）において、鞭毛基部の構造を形成するのに必要な δ チュー
ブリン、ε チューブリン遺伝子がゲノム中に存在するかを調べた。これらの遺伝子はヒメツリ
ガネゴケ、イヌカタヒバには存在していたが、シロイヌナズナでは失われていた（Banks et al.
2011, 村田、未発表データ）。鞭毛の喪失に伴って鞭毛構成タンパク質遺伝子も変化したと考えられる。

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４．モータータンパク質の変化
ダイニンは微小管上を滑るモータータンパク質で、微小管のマイナス端に向けて動くことが知られている。鞭毛では、ダイニンが規則正しく配置することにより滑り力が生じ、その力を利用して鞭毛が屈曲する。ダイニンのもう一つの役割は細胞内輸送である。ダイナクチン複合体を作り、細胞質微小管のプラス端からマイナス端に向けて複合体上の小胞などを運ぶ。細胞内輸送に働くダイニン（細胞質ダイニン）は鞭毛のダイニン（軸糸ダイニン）と別の分子種であり、コードする遺伝子も違っている。ゲノム配列がわかっているヒメツリガネ
ゴケ、イヌカタヒバにおいては、細胞質ダイニンのオーソログ遺伝子は見つかっていない（Banks et al. 2011, 村田、未発表データ）。陸上植物の細胞内輸送に働くモータータンパク質
は鞭毛の有無にかかわらず動物細胞と違っていると考えられる。
もう一つの微小管モータータンパク質であるキネシンが細胞質ダイニンの欠損を補っている可能性がある。多くのキネシンは微小管のプラス端に向けて動くが、一部のキネシン（kinesin-14）は細胞質ダイニン同様マイナス端に向けて動く。陸上植物シロイヌナズナ、ヒメツリガネゴケのゲノムは約 60 個のキネシン遺伝子を持つが、その内でそれぞれ 21 個、15個のキネシンは kinesin-14 に分類される(Shen et al. 2012)。この数はヒトの kinesin-14 遺伝子数
（4 個： (Richardson et al. 2006)）に比べてはるかに多い。陸上植物の kinesin-14 がどのような機能を持っているのか、今後の解析が期待される。

５．細胞板の形成と分裂面の制御
ストレプトファイツ類の細胞における最も顕著な変化は細胞分裂様式の変化であろう。ス
トレプトファイツ類の基部で分岐したクレブソルミディウムは細胞がくびれて分裂するが、シャジクモや陸上植物は細胞中央部から細胞板を形成して分裂する。ストレプトファイツ類のどこで細胞板形成が獲得されたかは、各分類群の系統関係に諸説あること（図１）、接合藻類アオミドロの分裂様式を細胞板形成と見なすかどうかが未解決であること(McIntosh et al.
1995; Sawitzky and Grolig 1995)により、わかっていない。シャジクモ、接合藻類ミカヅキモ、
クレブソルミディウムのゲノム解析は現在進行中である。これらの結果により系統関係が明らかになり、接合藻類の細胞分裂機構が遺伝子レベルで明らかになれば、分裂様式の進化も明らかになると思われる。
ストレプトファイツ類は、細胞板の獲得と多細胞化に伴い、細胞分裂面の制御機構を獲得したと考えられる。陸上植物では、細胞分裂の分裂面は紡錘体の形成以前に決定されており、細胞板は細胞表層の分裂予定位置に向かって伸びる。分裂予定位置を決めるのが分裂準備帯（preprophase band）と呼ばれる微小管の帯で、細胞周期の G2 期～前期に発達する(Mineyuki
1999)。細胞板は分裂予定位置に向かって伸長し、最終的に細胞板の膜と分裂予定位置の細胞膜は融合する。
細胞板の伸長方向の制御は複雑な現象であり、詳細はわかっていないが、シロイヌナズナ
では kinesin12 に分類される２つのキネシン（POK1, POK2）が分裂予定位置へ細胞板を導くのに関与していることが報告されている(Müller et al. 2009)。これらのキネシンが植物の進化のどの時点で獲得されたかは不明だが、分裂面制御の獲得に関与している可能性があり興味
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深い。

６．陸上植物の進化にともなう細胞骨格遺伝子の増幅
遺伝子重複とその後の遺伝子機能分化は進化における新規機能獲得の原動力となる。それでは、細胞骨格関連タンパク質をコードする遺伝子で、キネシン以外で植物の進化の間に重複したものはあるのだろうか。我々は、イヌカタヒバのゲノムプロジェクトの解析中に、一部の細胞骨格遺伝子が陸上植物の進化の過程で重複していることに気付いた(Banks et al.
2011)。
クラミドモナス、ヒメツリガネゴケ、イヌカタヒバ、イネ、シロイヌナズナのゲノム情報をもとに遺伝子系統樹を構築することにより、細胞骨格遺伝子の数が陸上植物の進化のいつの時点で増えたのか、あるいは失われたのか、推測することが可能である。モータータンパ
ク質を除く細胞骨格関連遺伝子３３個の遺伝子系統樹を構築したところ、アクチン重合開始
因子フォルミン、アクチンフィラメント切断因子 ADF、微小管束化因子 MAP65 の遺伝子数が維管束植物の進化に伴って顕著に増加していることがわかった（表１）。これらの重複遺伝
子は新規機能を獲得した可能性がある。MAP65 は植物の細胞骨格関連因子の中で解析が比較的進んでおり、細胞の伸長方向制御や細胞質分裂に関与することがわかっている。MAP65 において新規の機能獲得はあったのだろうか。次項では MAP65 について詳説する。
表１ クラミドモナス（C. reinhardtii：Cre）、ヒメツリガネゴケ（P. patens：Ppa）、イヌカタ
ヒバ（S. moellendorffii：Smo）、イネ（O. sativa：Osa）、シロイヌナズナ（A. thaliana：Ath）における MAP65、フォルミン(formin)、ADF の遺伝子数
種名

Cre

Ppa

Smo

MAP65

1

5

5

11

9

Formin

1

8

3

14

19

ADF

1

1

3

10

12

Osa

Ath

Banks et al. (2011)掲載の遺伝子数にクラミドモナス遺伝子数（NCBI データベース）を補足。

７．微小管束化タンパク質 MAP65 の機能分担
MAP65 は、真核生物に保存された微小管束化タンパク質で、後生動物の PRC1（protein
regulator of cytokinesis 1）、酵母の Ase1（anaphase spindle elongation 1）と保存されたアミノ酸配列を持つ(Walczak and Shaw 2010)。後生動物 PRC1、酵母 Ase1 の機能は紡錘体における微小管の架橋である。紡錘体においては、両極から伸長した微小管が赤道面で交差して架橋する。
この架橋に働くのが PRC1/Ase1 であり、反対向きの極性を持つ微小管を架橋することがわかっている（図２）。

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図２ 紡錘体における微小管束化タンパク質 PRC1/Ase1 の局在。青は染色体、細線は微小管を表す。＋、－は微小管のプラス端とマイナス端を示す。
ヒトやマウス、酵母は１個の PRC1/Ase1 遺伝子しか持たないが、植物の MAP65 遺伝子はシロイヌナズナで 9 個と多く、その遺伝子数はイヌカタヒバと被子植物の祖先が分かれた後に増加したと推測される。後生動物や菌類と異なり、被子植物の MAP65 ファミリーは細胞分裂以外でも機能を持つことが明らかになっている。MAP65-1 は細胞周期を通じて発現し(Smertenko et al. 2004)、間期の細胞において細胞の伸長促進に働く(Lucas et al. 2011)。シロイ
ヌナズナ根においては、MAP65-1 と、その重複遺伝子 MAP65-2 は転写因子 PLETHORA の発現制御を受け、微小管配列の制御を行って細胞周期が進んだ時の分裂面を制御する。map65-1
map65-2 ２重変異体の根は内皮を形成する不等分裂を行うことができず、内皮の分化が起こらないことが明らかになっている(Dhonukshe et al. 2012)。
複数の MAP65 遺伝子の機能分担はどのようになっているのだろうか。細胞質分裂時には、
MAP65-3(PLEIDE)は後生動物や菌類と同様に赤道面の微小管交差のみに局在する。ple 突然変
異体は赤道面での微小管架橋が弱くなり、両極から伸びる微小管の間隔が広がることが明らかになっているため(Müller et al. 2004)、MAP65-3 の機能は後生動物や菌類と同じ赤道面の微小管架橋であると考えられる。一方、前述の MAP65-1 は分裂組織でも発現しており、細胞質分裂装置である隔膜形成体（phragmoplast）全域に分散して局在する（図３）。
図３

シロイヌナズナの細胞質分裂におけるMAP65-1、MAP65-3 の機能分担の推測。細胞板を形成中の細胞の模式図と、簡略化した細胞板近傍の微小管構造を示す。微小管の構造は Ho et al. (2011)を参照した。MAP65-3 は赤道面の微小管架橋に局在し、娘核側から伸びる微小管を繋ぎ止めるのに働く（Müller et al. 2004）。MAP65-1 は隔膜形成体全体に存在し(Murata et al. 2013)、微小管の安定性を制御する（Sasabe et al. 2006）。

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タバコの MAP65-1 は MAP（mitogen activated protein）キナーゼカスケード（NACK PQR 経路）の下流でリン酸化制御を受け、リン酸化を受けない変異タンパク質の過剰発現が隔膜形
成体の拡大阻害を引き起こすことから、その機能は隔膜形成体全域の微小管の安定性の制御と考えられる(Sasabe et al. 2006)。しかしながら、タバコ MAP65-1 オーソログであるシロイヌ
ナズナ MAP65-1/MAP65-2 map65-1 map65-2２重変異体の細胞質分裂異常は報告されておらず、他の MAP65 ファミリータンパク質と機能重複している可能性が考えられる。今後、他のMAP65 ファミリー遺伝子の解析が進むことにより、MAP65 ファミリーの遺伝子重複と機能分化の全貌がわかってくるものと思われる。

８．おわりに
本稿では、植物の進化に伴う細胞骨格遺伝子の遺伝子増幅と機能分化の可能性について、
微小管関連タンパク質を中心に概説した。アクチン関連タンパク質については、本稿で扱うことができなかったが、進化に伴う遺伝子機能獲得が起こっている可能性は充分にある。たとえば、アクチン－ミオシン系を使った原形質流動はストレプトファイツ類の進化の途中で細胞の大型化に伴い獲得されたと考えられる。葉緑体定位運動もアクトミオシン系が関与する現象だが、植物体の固着生活に伴って進化した形質と考えられるため、ストレプトファイ
ツ類の進化の過程で獲得されたと考えられる。これらの形質の獲得とアクチン関連タンパク質の遺伝子増幅はどのように関係しているのだろうか。原形質流動や葉緑体運動におけるア
クチン繊維のダイナミックな再編成の分子機構が明らかになり、アクチン関連タンパク質の機能が明らかになれば、アクチン関連タンパク質の機能分化の進化における役割がわかってくると期待される。

謝辞
本稿を完成させるにあたり、日渡祐二博士（Aberystwyth University, U.K.）には、キネシン
タンパク質の機能をはじめとする様々な建設的なコメントをいただきました。感謝いたします。

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植物細胞壁の構造と機能の多様性
横山隆亮，西谷和彦
東北大学〒980-8578

大学院生命科学研究科

宮城県仙台市青葉区荒巻字青葉 6-3Structural and Functional Diversity of Plant Cell Wall
Key words: primary cell wall; (1,3;1,4)-β-D-glucan; xyloglucan; rice
Ryusuke Yokoyama & Kazuhiko Nishitani
Graduate School of Life Sciences, Tohoku University
6-3, Aoba, Aramakiaza, Aoba-Ku, Sendai, Miyagi 980-8577, Japan
1. はじめに植物細胞の表面には多様な分子の複雑な相互作用によって細胞壁が構築される。進化の過程において，植物は細胞壁の形質を改変することで多くの機能を獲得し，さまざまな環境に適応した多様な種を繁栄させた。約 4 億 5 千年前，水中で生息していた藻類の一部は，大気中でも体内の水分が蒸発しない外層を持った細胞壁を獲得することで，陸上への進出に成功した。陸に上がった植物は，厚い細胞壁で囲まれた道管を分化させることで，地中深くから吸い上げた水分を全身に供給することが可能になり，水辺から乾いた大地へと生息域を拡大した。さらに植物は厚い細胞壁を持つ繊維細胞などを発達させることで，重いからだを支えることが可能になり，巨大化することに成功した。このように細胞壁が特殊な機能を獲得することで，植物は新たな環境に適応してきたのである（横山&西谷 2011）。
一般に植物の細胞壁は，最初に細胞表面に構築される一次細胞壁と，細胞伸長終了後に一次細胞壁の内側で肥厚する二次細胞壁に分類され，道管や繊維細胞などの厚い細胞壁の大部分はこの二次細胞壁で構成されている（図 2）。これまでの植物進化の研究においては，陸上
植物の大型化のための細胞分化という観点から，特に道管や繊維細胞の二次細胞壁の獲得プ
ロセスが注目されていた。しかしながら近年，すべての植物細胞の形状基盤となる一次細胞壁も長い植物の歴史の中で変遷してきた可能性が示され，植物種の多様化との関係が重要視され始めている（横山 2013）。一次細胞壁は細胞形成のあらゆる過程においてさまざまな役
割を担うことから，一次細胞壁の形質と植物の形態・機能が密接に関連しているものと考えられる。本稿では，細胞壁の主要な構成成分の１つであるヘミセルロースに着目して，植物
種間の相違点から推測されている一次細胞壁の進化プロセスについて概説する。また他の被子植物とは全く異なる構造を獲得したイネ科植物の細胞壁の最新の知見を紹介し，イネ科植R. Yokoyama & K. Nishitani - 1
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物の細胞壁研究を通して明らかになった細胞壁の比較研究の問題点等についても説明する。

セルロース微繊維
ヘミセルロース

原形質膜

一次細胞壁

二次細胞壁

図１ 細胞壁の立体モデル。セルロース微繊維とヘミセルロースの基本骨格（左）と細胞伸長時の基本骨格の伸展（中央）を示す。右は細胞伸長終了後に形成される二次細胞壁。

2. 一次細胞壁の基本構造
植物細胞は，動物細胞の細胞分裂と異なり，細胞板という新たな細胞壁を構築することで細胞質分裂を完了する。また植物細胞は周囲を覆う細胞壁を弛めることで肥大成長を行っている。このように細胞表面に最初に構築される一次細胞壁は細胞形成のあらゆる過程で機能し，植物体全体の形作りに大きく貢献している（Somerville et al. 2004）。
一次細胞壁の主要な構成成分は，グルコースが直鎖状に重合したセルロースで，通常は 30〜36 本のセルロース分子がシート状の束になり結晶化している。このセルロース微繊維間をキシログルカンなどのヘミセルロースが架橋することで，一次細胞壁の格子状の基本骨格が形成される（図 1）。化学的に安定なセルロース微繊維間を切断や繋ぎ換えの容易なヘミセル
ロースで架橋することで，一次細胞壁は硬さだけではなく，伸展などを許容する柔軟性を兼ね備えているのである（Carpita and Gibeaut 1993）。このセルロース微繊維とヘミセルロースから成る基本骨格の隙間に，ペクチンや構造タンパク質などの多様な分子が充填されること
で一次細胞壁は完成する（McCann and Roberts 1991）。

3. 陸上植物の一次細胞壁の起源
セルロース微繊維はセルロース分子のならび方によってセルロース I とセルロース II に分類され，さらにセルロース I にはセルロース I β (単斜晶)とセルロース I α (三斜晶)という２つのタイプに分けられる。陸上植物の主要なセルロース微繊維はセルロース I β タイプであり，また陸上植物の直接の祖先と推測されるシャジクモ綱の緑藻もセルロース I β から成る
セルロース微繊維を多量に含むことなどから，セルロース微繊維を主成分として構築される
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一次細胞壁の基本構造は，植物が陸上に進出する以前に獲得されたものと推測される（図２
A と B）。

A
②
シダ
被子植物
裸子植物
③
単子葉植物
双子葉植物

④
ツユクサ植物

①
コケ

シャジクモ

ヒカゲノカズラ
トクサ

マツバラン

B
主にセルロース Iβから成るセルロース微繊維を持つ
セルロース微繊維とヘミセルロースから成る強固な基本骨格を形成する
二次細胞壁を形成する

C④ ツ ユク サ植物③ 双子葉植物

② シダ

① コケ

図２ 植物の系統と細胞壁の構造、一次細胞壁の基本骨格との関係。
A: 植物の系統樹。B: 細胞壁の共通する構造。Bの矢印の領域は、系統樹に対応した細胞壁の共通点を示している。C: 各植物種における一次細胞壁の基本骨格。マンナン（緑）、キシログルカン（赤）、グルクロノアラビノキシラン（紫）、1,3:1,4-β-D-グルカン（青）一方，セルロース微繊維間を架橋するヘミセルロースは，植物種の間で大きく異なっている（図２C; Popper and Tuohy 2010）。多くの陸上植物の主要なヘミセルロースであるキシログ
ルカンは藻類ではほとんど使われていないものと考えられる。アオミドロではグルコースとキシロースから成るキシログルカンと類似の多糖が見つかり（Ikegaya et al. 2008），また最近，オウシャジクモでもキシログルカンが造精器の一部の細胞で確認されている（Domozych et al.
2009）。さらにハコネシャジクモでキシログルカンの主鎖を合成する CslC と類似の遺伝子が見つかり（Del Bem and Vincentz 2010），センジシャジクモではエンド型キシログルカン転移酵素／加水分解酵素遺伝子が単離されたことから（Van Sandt et al. 2007），植物は陸に上がる
前にキシログルカンの合成機能を獲得していたものと考えられる。しかしながら，その含有量などから考えてセルロース微繊維との架橋構造を形成するためのヘミセルロースとして機能している可能性は低く，キシログルカンがセルロース微繊維を架橋して基本骨格を形成す
るようになったのは，コケやシダ以降の陸上植物と考えるのが妥当かもしれない。シャジク
モ藻類の細胞壁はキシログルカンの代わりにマンノースを含む多糖を多量に含んでいることから，マンナンなどの多糖が基本骨格を構成している可能性がある。あるいは水中という環境では強固な格子状の基本骨格は必要ないため，セルロース微繊維間を微量の多糖が繋いでいる程度なのかもしれない。
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4. 一次細胞壁の多様性
初期の陸上植物は現在のコケまたはシダ植物に近縁のものであったと考えられている。コケの細胞壁はシャジクモ藻類と同様にマンノースを含む多糖を多量に含んでいる（Sarkar et al.
2009）。しかしながら両種の細胞壁の決定的な違いは，コケの細胞壁にはキシログルカンが十分に存在するということである。コケのキシログルカンは，側鎖付加のパターンなどが他の陸上植物のキシログルカンとは異なるものではあるが，基本的にはセルロース微繊維を架橋しているものと考えられる。陸で生活を始めた植物は，水の中よりも強靭な細胞壁が必要であったため，セルロース微繊維とキシログルカンの基本骨格を構築するようになったのかもしれない。またコケの細胞壁では，種子植物の主要なペクチンの１つであるラムノガラクツ
ロナン I や，構造タンパク質のヒドロキシプロリン・リッチ・タンパク質なども見つかっており，基本骨格形成に伴い，その隙間を埋める多様な多糖やタンパク質も合成されるようになったのかもしれない。
シダ植物の細胞壁では，マンノースを含む多糖の割合は減少し，キシログルカンの含有率が増大している。シダ植物から派生したと考えられる裸子植物，さらに被子植物では主要な
ヘミセルロースはキシログルカンとなり，より強固なセルロース微繊維とキシログルカンの基本骨格を構築するようになったと考えられる。また裸子植物と被子植物では，ペクチンなどの多様化も進み，ホモガラクツロナン，ラムノガラクツロナン I，II が基本骨格の隙間に充填されている。このように多くの裸子植物と被子植物の一次細胞壁は，セルロース微繊維とキシログルカンの基本骨格に多様なペクチンや構造タンパク質が充填された構造から成り，
タイプ I 細胞壁と呼ばれている（Carpita 1996）。
被子植物は多様な種に分化する過程で単子葉植物群という一大分類群を形成した。さらに
単子葉植物の一部はツユクサ亜綱の植物群として派生したが，この一群の植物種はタイプ I
細胞壁とは全く別の一次細胞壁を構築するようになった（Yokoyama and Nishitani 2004）。この一次細胞壁は，タイプ II 細胞壁と呼ばれ，主要なヘミセルロースがキシログルカンからグル
クロノアラビノキシランや 1,3:1,4-β-D-グルカンに置き換わっている。またペクチンや構造タンパク質も著しく減少し，代わりにフェニルプロパノイド類が利用されている。こうしてツユクサ亜綱の植物の細胞壁は，基本骨格に多様な分子を充填するという構造は維持している
ものの，セルロース微繊維以外の構成分子は殆ど置き換えてしまったものと考えられる。

5. イネ科植物のヘミセルロースの機能の多様性
ツユクサ植物においてセルロース微繊維を架橋するキシログルカンが他のヘミセルロースに置き換わった理由は明らかになっていない。裸子植物や他の被子植物の成長・形態形成では十分に役割を果たしていた一次細胞壁の基本骨格を根本から置き換える利点があったはずであるが，ヘミセルロースの置換による基本骨格の特性の違いなどは全く分かっていない。
ツユクサ植物における新規細胞壁の獲得の理由を理解するためには，イネ科植物におけるグ
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ルクロノアラビノキシランや 1,3:1,4-β-D-グルカンの機能解明が重要であると考えられる。
イネ科植物における各ヘミセルロースの機能解明については現在進行中であるが，幾つかの興味深い研究成果も報告されている。特にイネ科植物特有の多糖と考えられていた
1,3:1,4-β-D-グルカンについては，基本骨格の形成だけではなく多面的な機能を植物にもたらしている可能性が示されている。イネやコムギおける 1,3:1,4-β-D-グルカン量を調べた研究では，伸長成長に伴う 1,3:1,4-β-D-グルカン量の急速な増減が確認され，キシログルカンと同様に細胞伸長における一次細胞壁の伸展との関連性があると考えられた（Gibeaut and Carpita,
1991; Chen, et al. 1999）。しかし一方で，伸長後の葉等でも貯蔵物質として蓄積し，エネルギ
ー源として利用されている可能性も示されている（Roulin and Feller 2001）。また 1,3:1,4-β-Dグルカン合成酵素遺伝子の欠損した突然変異体では，成長伸長への影響よりも植物組織の物
理的強度や病原抵抗性などへの影響が顕著にみられることが報告されている（Vega-Sánchez etal. 2012）。

6. 1,3:1,4-β-D-グルカンの新規機能
当 研 究 室 に お い て も ，
1,3:1,4-β-D-グルカンを特異的に加水分解する酵素を過剰発現した形
質転換体を作成し，1,3:1,4-β-D-グ
ルカン量を減少させることによる植物体への影響を調べたが，突然変異体と同様に植物組織の物理的強度が著しく低下していた。また
興味深いことに，この物理的強度の低下はケイ素存在下で生育させた場合にのみ顕著にみられることが 明 ら か に な っ た （ Kido et al.
submitted）。イネ科植物ではケイ酸を積極的に体内に取り込み，細胞壁等にシリカを形成することで組織の物理的強度や病害抵抗性を獲

図３ 様々な植物種の組織切片（左）とMLGの蓄積（右）。
a; スギゴケ（コケ植物）、b; イヌカタヒバ（シダ植物ヒカゲノカズラ門）、
c; マツバラン（シダ植物マツバラン綱）、d; スギナ（シダ植物トクサ綱）、
e; セイヨウタマシダ（シダ植物シダ綱）、f; ソテツ（裸子植物）、g; シロイ
ヌナズナ（被子植物双子葉植物綱）、h; イネ（被子植物ツユクサ亜綱）

得 している ことが 知られ てい る
（Currie and Perry 2007）。我々の研究成果は，1,3:1,4-β-D-グルカンがこのシリカの蓄積に関与していることを示すものであると考えられる。陸上植物の中で，イネ科植物と同様にシリカを蓄積することで物理的強度や病害抵抗性をもつものとして，トクサ綱のシダ植物が知られている（Takahashi and Miyake 1997）。近年，これまでイネ科植物に特有の多糖と考えられて
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いた 1,3:1,4-β-D-グルカンがトクサ綱のシダ植物において発見された（図 3; Sørensen et al. 2008;
Fry et al. 2008）。1,3:1,4-β-D-グルカンとシリカをもつ植物種の一致は，1,3:1,4-β-D-グルカンのシリカ蓄積における機能を支持する結果である一方で，なぜ進化的にかけ離れたイネ科植物とトクサ植物だけがこのような仕組みを獲得したかという新たな興味深い疑問も生じている。

7. 一次細胞壁の組織特異性ab

近年，ツユクサ植物のヘミセルロースに関す

る

もう１つの重要な研究成果が出ている。これまで知見では，ツユクサ植物の細胞は全てタイプ II

細胞壁であり，タイプ I 細胞壁に特徴的なキシロ
ルカンはほとんど使われていないと考えられ

グ
c

d

て

いた。しかし近年のゲノム解読によって，イネにもキシログルカンの代謝に関わる多数の遺伝子
et al.

が存在していることが明らかになり（Yokoyama
2004; Yokoyama and Nishitani 2004），再びイネにけるキシログルカンについての詳細な分析がわれた。キシログルカン分子を特異的に認識す

図４ イネの茎におけるキシログルカンの分布。a カル
コフラーで染色したイネの茎の横断面。b 間接蛍光抗体法を用いて染色したイネの茎のキシログルカンの分布。c, d それぞれaとbの維管束を拡大したもの。矢印は師管を示す。

お行
る

モノクローナル抗体を用いた組織免疫学的解析が行われ，イネの大部分の細胞の細胞壁ではキシログルカンが検出できないが，師管の細胞壁だけには多量のキシログルカンが蓄積していることが判明した（図 4; Brennan and Harris 2011）。ツユクサ植物は大部分の細胞の細胞壁をタイプ I からタイプ II へと交換したが，師管の細胞だけは，キシログルカンとセルロース
微繊維の基本骨格が重要な役割を果たしているため，タイプ I 細胞壁を維持したものと考えられる。

8. 今後の展望
イネのキシログルカンの研究成果は，１つの植物種においても，幾つものタイプの細胞壁が存在することを明確に示すことできた良い例なのかもしれない。従来の生化学的分析では，
植物組織・器官の全体を材料としていることから，幾つものタイプの細胞壁の混合成分から
細胞壁構造を推測していた可能性もある。今後は細胞レベルで一次細胞壁の構成成分や構造を分析し，細胞の形成や機能分化における一次細胞壁の役割を明らかにすることが必要であろう。各植物種において個々の細胞・組織が獲得してきた細胞壁の特性を理解することで，はじめて細胞壁という視点から，植物が辿ってきた進化の道筋を知ることが可能になるのかもしれない。

引用文献
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