Vol.２６ No.１，２００７

９5
センターニュース

分析機器解説シリーズ（95）◆イメージングプレート（IP）法による金属・セラミックス中の水素分布の可視化 ……………………………… P1
九州大学大学院総合理工学研究院

大塚哲平

トピックス

◆ハイブリッドSEMの開発と応用 ― SEMと螢光顕微鏡 ― …… P4
九州大学病院・中央形態分析室
日本電子株式会社
日本電子データム株式会社
久留米大学医学部解剖学講座

金丸 孝昭
高洲 信一
重松実
中村桂一郎

分析機器解説シリーズ（95）

イメージングプレート（IP）
法による金属・セラミックス中の水素分布の可視化
九州大学大学院総合理工学研究院

1

大塚

哲平

（TARG）にIP 法を適用した例を紹介し、その測定原理はじめに材料中に放射性同位元素（RadioIsotope, RI）を導入し、このRIから放出される放射線（α線，β線，γ線，X 線など）の写真感光作用を利用して材料表面の2次元を解説する。

2

イメージングプレート（IP）法とは？

RI分布を可視化・定量化する手法をオートラジオグラIP 法は、支持板表面に輝尽性発光物質（BaFX：Eu2+フィ（AutoRadioGraphy，ARG）と呼ぶ 1，2）。1990年（X＝Cl，Br，I），バリウムフルオロハライド）を塗布し代にFUJIFILM社が開発したイメージングプレート（IP）たIPに放射線情報を 記録 し、専用のリーダーによは煩雑な手順と経験の積み重ねとが必要である写真にり 読出し

代わる2次元画像センサーであり、ARG 分野の発展に射線の積分強度およびその2次元強度分布画像を得る貢献し、急速に広く普及しつつある。この点では、我々方法である。可視光を照射すると放射線情報は 消去の身の回りでも、銀塩カメラがデジタルカメラに取っされるので、IPを繰り返し使用することも可能である。て代わられつつあるという状況によく似ている。ここでを行うという実に簡素な手順により、放放射線情報の 記録

では、図1に示すような輝尽は、金属・セラミックス材料中の水素の動きを捉える性発光物質層をRI含有試料表面に密着させて放射線にために、水素に極微量の放射性水素同位体（トリチウ

露光 するため、一般的には試料 表面 の放射線強ム）を混入させて行うトリチウムオートラジオグラフィ

度分布またはRI濃度分布が得られると表現されること（1）

分析機器解説シリーズ（95）より検量しておけば、ただちに放射線強度として定量することができる。
IPリーダーの読出しセルサイズは、10〜100μmから選択することができる。金属・セラミックス中に溶解したトリチウムから発せられるβ線（電子線）の飛程は以下の式で表される 5）。
x＝log E ；y＝log RP
y＝-5.100+1.358x+0.215x2-0.043x3

�������� 3)（0.1＜E ＜100keV ）図 1 IP の断面構造模式図 3)

ただし、Eはエネルギー（keV）、RP は飛程（gcm-2）である。トリチウムβ線は最大エネルギー18.6keV（平が多い。後に、少し詳しくこの 表面 を取り扱って、均エネルギー5.7keV）の連続スペクトル線であり、例

IP 法の空間分解能を考えてみたい。

えば鉄（密度7.87gcm-3）中の最大飛程は0.9μmで放射線情報の 読出し については、放射線露光さある。制動 X 線や特性 X 線は、透過能が高く、線エネルれたIPを精密に搬送し、その表面をレーザーで光走査ギー付与が低いので全体のバックグラウンド上昇に寄2+4)
�3
BaFX:Eu����������
することにより行う（図2参照）。これにより生じる輝与する可能性はあるが、トリチウム2次元位置情報に関尽発光（PhotoStimulated Luminescence，PSL）を光する限り影響は小さいと考えられる。IPを試料 表面電子増倍管で計測する。に理想的に密着させたと仮定すれば、IP 法により測定した放射線強度は、 表面 から約1μm深さからのβ線が寄与した放射線積分強度であるということができる。
トリチウム専用のIPには、既出の図1中に描かれている表面保護膜（10μm）がない。これは、トリチウムから発せられるβ線のエネルギーが低く、保護膜といえども感度低下を招くためだけでなく、試料 表面 と輝尽性発光層に隙間があるとトリチウムβ線放出の立体方位角によって空間分解能の低下を招くためでもある。この読出しサイズが、2次元画像情報として十分であるかど
�����
図 2 IP リーダーの概略図

1.3 meV3)

37 meV
2.5 eV

2.1 eV

図3に輝尽蛍光物質の発光メカニズムの概念図を示

F+/F(Br-)4）

す 。放射線量子（光子・電子など）が輝尽蛍光結晶に6.6 eV
8.2 eV

入射すると電子−正孔対が生成され、電子は結晶中の4.6 eV格子欠陥に捕獲された状態、つまり放射線情報が 記録 された状態となる。 読出し はHe Neレーザーの3.2 eV

F+/F(F--)633 nmHe-Ne����
390 nm�������

赤色光（633nm）を照射することにより生じる青色光

Eu2+/Eu3+（400nm）の強度すなわちPSL 強度を測定するわけである。このPSL 強度は、FUJIFILM社が提唱する独自な単位であるが、入射放射線量子数に比例しており、予め既知の放射能を持つ物質でラベルされたスケールに（2）������

�����

図 3 BaFX：Eu2+ の輝尽発光メカニズム 4)

分析機器解説シリーズ（95）うかは、研究目的に依るであろう。例えば、医学生物学が見られるのは、板の厚さに相当する表面に存在する分野のように数十センチのマウスにトリチウム標識化合トリチウムβ線が空気中（飛程約3mm）を通過したた物を注入し、ダイナミックなRIの動きを調べる場合にめである。x 方向にPSL 強度の線分析を行った結果を図は十分である。しかしながら、金属またはセラミックス

5 ⒞に示す。図中の黒線は、半無限媒質中における薄膜中の粒界や析出物などの欠陥周辺におけるトリチウム分拡散源からの拡散の解析解であり、実験データを良く布を可視化・定量化するには少なくとも数ミクロンオー再現していることが分かる。このような方法により、金ダーの読出しセルサイズが必要である。

属中のトリチウムの拡散係数を簡便かつ迅速に測定することが可能となる。また、将来的に空間分解能の向上

3IP法により金属中のトリチウムの動きを可視化する！

が達成できれば、トリチウムが金属中の欠陥（粒界、析出物など）に捕獲されたり、局所的に集積したりしながら動く様子が観察されると期待される。

ジルコニウム金属板の片側端面にトリチウムを導入し、673K で10時間アニールしてからIP 法を適用した
�������������������������� (a)�������������
例を紹介する 6）（図5 ⒜参照）。図5 ⒝は、IP 像すなわ
おわりに�������� IP ����, (b)IP �, (c)PSL ��������
ちPSL 強度分布像であり、点線で囲まれた矩形部分が、4試料が存在していた領域に相当する。読出しサイズは以上に述べてきたように、IP 法により得られる情報50μmである。また、赤色から青色までのグラデーシは、金属・セラミックス中を動きまわるトリチウム（水ョンは、PSL 強度を16ビット階調で示している。ただ素）の言わばスナップショットともいうべきものであし、今回はコントラストをつけるために色調とPSL 強度る。空間分解能こそ写真技術による ARG（約1μm）にの関係は線形でなく指数関数形としている。図中では試及ばないものの、読出し解像度の向上が計られてきて料内部（x 方向）にPSL 強度分布が見られ、x 方向に進いる。ただ、原理的には読出し赤色レーザーの広がりのむにつれて徐々に減少している。これはトリチウム（水立体角の寄与を少なくするために輝尽発光層を薄くす素）が試料端面から試料内部へと拡散した様子を明瞭れば空間分解能の向上が達成できそうであるが、同時に示すものである。試料が存在しない領域にIP の感光に感度が低下してしまうという問題がある。現状では、マクロでダイナミックな水素の動きおよび濃度分布の定量化はIP 法で、ミクロオーダーの局所的な水素集積・(a) IP
Tritium injection side Sample

捕獲現象は従来の写真 ARGで行い、相補完的に金属中の水素移動現象を解明していくのが最良である。今後の水素エネルギー社会におけるインフラ構築や水素吸蔵合金開発、プロトン導電体開発分野において、ますまy(b)SamplePSLintensityHigh

参考文献xLow3）富士フィルム株式会社ホームページより許可を得て転載．

2.5

Da= 1.6 x 10-10 m2s-1(673 K)

21.5

http://fujiﬁlm.jp/business/lifescience/index.html
4）Y. Iwabichi, N. Mori, K. Takahashi, T. Matsuda and S.
Shinoya：Jpn. Appl. Phys., 33, 178（1994）．

15）J. Gledhill：J. Phys. A, 6, 1420（1973）．

0.501）宮原諄二：Radioisotopes, 47, 143（1998）．
2）大塚哲平：顕微鏡 , 39, 59（2004）．

3
PSL intensity / PSL mm-2(c)

すその威力を発揮すると思われる。

00.5

11.5Distance, x / cm2

図 4 IP 法によるジルコニウム中のトリチウム拡散挙動の可視化⒜トリチウムを導入したジルコニウム板状試料への IP 法
適用例，⒝ IP 像，⒞ PSL 強度プロファイル

6）K. Hashizume, Y. Saruwatari, T. Hirano, T. Otsuka, T.
Tanabe, Y. Tsuchiuchi：Proc. 2005 Water Reactor Fuel
Performance Meeting, 1119（2005）．

（3）

トピックス

トピックス

ハイブリッドSEMの開発と応用
金丸

孝昭１、高洲― SEMと螢光顕微鏡 ―信一２、重松実３、中村桂一郎４１
九州大学病院・中央形態分析室、２日本電子株式会社、日本電子データム株式会社、４久留米大学医学部解剖学講座

３

1. はじめに
医学生物系の微小領域形態観察装置、すなわち顕微鏡と

2. 電顕と光顕の違いとは
１）光顕の特徴

して、1960 年前後から70年代をピークに、電子顕微鏡

生物用光学顕微鏡で一般に用いられる波長域（可視（電顕）は、世界の形態学をリードしてきました。ところが、光領域）は、約400 nmから約700 nmに至る300 nm

1980 年代末頃から、共焦点レーザー光学顕微鏡（光顕）間の狭い範囲です。光顕の分解能もその波長に依存しを筆頭に所謂、ニューマイクロスコピーと呼ばれている観ます。紫外線や赤外線は眼で見ることは出来ません。し察装置に中心的立場を譲り、電顕は特に高倍率での構造観

かし、紫外線または赤外線により、可視光域に励起され察研究へとシフトしています。

る螢光物質により標識された試料を観察する事で、眼にその理由としては、カラー情報を持つレーザー光顕の時見えない領域も含めて形態解析をする事ができます。ま間・空間分解能が高くなり、同時にGFP（Green Fluores-

た、光顕では生体の動的解析や立体再構築による形態観

cent Protein）など螢光物質による標識の応用が時代にマ察が可能になり、微分干渉像や偏光像あるいは、暗視野ッチし、生物の静的（3D）及び動的（タイムラプス）な観察が可能になって来たことがあげられ、また近年の原子像などを得る事も出来ます。

２）電顕の特徴

間力顕微鏡（AFM）や近接場顕微鏡等の新型顕微鏡の発電子顕微鏡の波長は短く、画像はモノクロです。また、達により、分解能も飛躍的に高くなり1分子観察も実用化

分解能は、加速電圧に依存します。透過型電子顕微鏡

されて来ました。

（TEM）で使う波長は、0.001 nmから0.0038 nm、走一方、高分解能の電顕も免疫電顕法、エネルギーフィル

査型電子顕微鏡では、0.012 nmから0.007 nmです。

ター法、高圧凍結法や低真空走査型電子顕微鏡、螢光 X 線

一般に、光顕と電顕の使用波長は10の6 乗ほどの差が分析法など、観察法が発展して来ました。ですが、電顕はあり、分解能が格段に異なります。そのため試料作製法

光顕に比べると元来モノクロ画像であり、色を持たないと（電顕用は、特に高精度の試料固定が求められる）を含いう原理的制約が存在し、また遙かに高い分解能であるがめ光顕とは全く別の観察装置として利用されます。

故に、試料作製法には多くの制約条件、例えば試料は通常TEMでは、試料を透過した電子からは、弾性散乱す脱水が必須で、作製時間や手順の煩雑性および種々の高価る透過電子や非弾性散乱の透過電子等が生じ、試料からな装置や器具の使用が必要であり、効率的な成果の生産性の吸収電流も発生します。これらの電子線により得られに乏しく不利な立場にあります。

る情報を利用し位相差電顕像やエネルギー吸収フィルタ

生物の形態観察は、ポストゲノム研究の発展と共に、今ー像も生成できます。また、SEMでは電子線照射により後高分解能観察だけでなく、機能解析をも可能とする多種試料からは二次電子、反射電子、オージェ電子、カソー多様の観察法と試料作製法の開発が必要です。光顕用の多ド・ルミネッセンス（CL）、連続 X 線、特性 X 線が発生し、彩で効果的な標識法と電顕レベルでの高分解能観察、このSEMに各種検出器を装着することで様々な画像データ相反する要求が融合した、新しい観察装置と試料作製法のを得ることが出来ます。

開発が、生物系をはじめ各産業分野における最先端研究の立場から希求されています。その第一歩として、現在、我々は、機能的観察を可能とする螢光光顕と、高分解能形態観3. 螢光標識の SEM 観察は可能か察のための走査型電子顕微鏡（SEM）の特徴を併せ持っ生体内の分子の局在と形態の同時観察は、今後さらに発た、ハイブリッドSEMの開発を目指しています。

展しなければならない重要な課題です。分子の局在を知る手段の一つである免疫組織化学的観察手法（主に螢光抗体法）は、光顕における主要な染色標識技術です。これ
までも、またこれからも形態学的・生化学的・生理学的研（4）トピックス
究分野にとって、大変重要な可視化技法です。ところで、光顕用の螢光試料を再度、電顕を用い高倍率で観察しようとすると、形態学的に一致した領域を特定することは困難です。その理
由のひとつには、一般のカラー情報を持つ光顕の（免疫）染色螢光物質をSEM用に再加工すると、標識された螢光は消失します。また、
たとえカラー情報を維持出Fig.1 螢光物質を取り込んだリンパ節来たとしても、光顕による低倍率画像からモノクロの電顕による高倍率画像観察時の移行的、連続的観察がうまく整合しません。各々の装置を分けて利用すると、試料標識点の位置特定確認が甚だ難しいのです。
そこで我々は、同一試料・同一顕微鏡鏡体を用いて、光顕用（免疫）染色試料作製法を応用した試料で螢光

Fig.2 試作1号機

標識を確認しつつ、同時にSEMによる電顕レベルの解像度をもち、立体的観察が可能な「ハイブリッドSEM」を開発しました。

5. ハイブリッド SEM の開発経過
１）1999 年：CL 顕微鏡での観察
ラット腹腔内に無機螢光物質を注入し、3日後肝臓な4. ハイブリッドSEMの優位性とはらびにリンパ節を取り出し、固定後脱水・乾燥・イオン

SEM単体では、数十倍から十数万倍までのズーム観察スパッタを行い、SEM試料を作製しました。この試料をが簡易に行えます。ハイブリッドSEMでは、試料のある1

トプコン社製 CL 像観察装置が装着されたSEMにて螢光点が標識された螢光粒子により輝いていることを光顕モー物質を含む細胞を依頼観察・撮影しました（Fig.1）。

ドで確認し、試料上の同一点をSEMモードでスムーズに

２）2004 年：ハイブリッドSEM1号機試作

高倍観察に移行できます。つまり、光顕と電顕の光源を同試作機のベースになるSEM（JSM-840）に、挿入可軸上に共存させることにより螢光標識された同部位を異な能な（螢光）光学顕微鏡を装着改良することで、ハイブる波長で同時観察できるのです。電子線と同軸上に組み込リッド化しました。光学系は、Zeiss 社製水銀ランプをまれた螢光顕微鏡にて捕捉され、螢光標識を付けた部位を光源とし、ニコン社製 3眼鏡筒および Leica 社製フィル

即座にSEM観察し、形態的特徴から対象物を短時間で同ターアダプターとJENOPTIK 社製冷却CCD 撮影装置を定することが可能になります。このことが、試料内の関心領域における微小構造体を容易に特定できるハイブリッド取り付け改造、作製しました。
（Fig.2）。

３）2005 年：試作2号機作製

SEMの持つ優位性です。またSEMの器械装置としての構波長分散型元素分析装置用のSEM（JXA-8600）に造的特徴により、試料搭載台周辺に多彩な検知デバイスをは、電子線が通る同軸上に光学レンズ（カセグレンタイ付加・設置するスペースも確保できます。

プ）が組み込まれています。このタイプのSEMを用い光学系を改造することにより1号機の抱えていた、同軸一致の不安定性問題を解消しました。この同軸型SEMをベー（5）トピックススとし、2006年春新規に昭和オプトロニクス社製レーザージにより発光が減弱します。当初、観察試料は、エター光源（488 nm）を導入する光学系アダプターを取り付ノール脱水や t ブチルアルコールへの置換を短時間に切け、Leica社製冷却CCDカメラ、SEM画像取得用データ

りつめただけの通常の試料作製法に近い方法で作製しま変換装置である日本電子製SemAfor等をSEM本体へ装着した。わずかに、残存する細胞内GFPタンパクが退色しました。これらの改造の結果、1つのディスプレー上にする前にすばやく観察を行いました（Fig.4）。

SEM像と螢光光顕像を同時表示することが可能になりま

２）2006 年：2号機作製時代した。光学系改良のため、2006年10月にレーザー光源

その後、我々の実験結果と文献による検討を繰り返を473nmと交換し、12月レーザー光源用新型アダプターし、その中でGFP 導入試料の脱水にはアセトンが適してへ交換し、引き続き実証実験を行なっています（Fig.3）。

いることがわかり、さらにアセトンをアセトニトリル等で置換した後、凍結乾燥する方法等を試してきました。
また、新たに各種有機溶剤に対応できる凍結乾燥装置

6. ハイブリッド SEM 用試料作製法確立の過程（真空デバイス社製：QFD-06）を作製し、比較的安定

当初、正常組織内に移植されたGFP陽性細胞をハイブ

6）。現在、これまでの試料作製法に改良を加えながら新リッドSEMで観察することを目的とした試料作成法の確なGFP陽性細胞の試料作製が可能になりました（Fig.5，
試料作製法を確立するための実験を継続中です。

立を目指しました。

１）2005 年：ハイブリッドSEM1号機試作時代
一般的SEM作製方法では細胞中のGFPは流出してしまいます。また、細胞中のGFP陽性細胞は、ビームダメ

7. ハイブリッド SEM の今後
これまでの目標は、細胞レベル（約10μm）までの観察

Fig.3 試作 2 号機

Fig.4 GFP 陽性細胞を持つ肝臓（6）トピックスでした。しかし、今後は細胞内小器官（オルガネラ：数μm）ダメージを受けます。それを回避するためには、新機軸や1分子観察（nanoオーダー）に移行していきます。そのたの螢光物質の導入が考えられます。また、有機系の螢光

めのソフトやハードが現在のままではその目標を達成し得な標識だけではなく、電子線ダメージへの耐性が高い無機いために、更なる改良発展を必要としています。具体的な目系の螢光標識を導入することもあり得ます。その結果、標の一つは、特定の分子1個を標識し確認することです。

ハイブリッドSEM内に組み込まれた光学系対物レンズ

１）試料作製法の改良

により、無機螢光体で標識された試料から、電子線励起オルガネラ等を免疫染色した生物試料をハイブリッドSEMで観察する場合、有機螢光物質による染色を行なされたCL 画像を取得する事も可能となります（Fig.7）。

２）新型観察装置作製

った試料をレーザー光源で励起して観察する事が主にな細胞内の微小器官やタンパク1分子を観察するには、ります。しかし、有機螢光物質は電子線により多少とも高倍率・低加速で観察可能な装置が必要です。これまでに製作してきたハイブリッドSEMの光学顕微鏡部は，現在確認した性能によると約 40 nmの大きさの螢光粒子を検出することができました。螢光強度が、今以上あれば10nm粒子サイズの検出も可能と思われます。ですが、現状の有機螢光標識では、これ以上螢光強度を引き上げる事は無理と判断し、新機軸の螢光物質の導入と共に、今以上明るい光学系（対物レンズ）を考案中です。
また内蔵する光学システムは、共焦点型レーザー光顕を導入することで、さらなる高倍率観察が可能になります。従来型のレーザー光顕をSEMに組み込むと、電子線と同軸上でのレーザースキャンが難しく、試料台が走査するマッピング型共焦点螢光タイプの光顕が有利です。これと高感度カメラの組合せにより、オルガネラレベルや1分子タンパクレベルの観察が可能になると予想します。光学系で特に大切なことは、十分な光量の確保と収差のない像を作ることの2点です。収差の無い像の為には、精度を求める高度の加工技術を要しますが、最終画像に強く影響するので殊更に重要です。
電子顕微鏡側には、加速電圧1kV 以下でも観察可
能な、電子銃部にフィールド・エミッション型のFE−SEM等を用いることで、出来るだけ試料ダメージを与えない高倍率観察が可能になります。さらに、SEM画像と光顕螢光像、両画像の高速表示を行い、その重ね合わせ

Fig.5 GFP 陽性の膵島様細胞が観察されたマウスの膵臓画像の同時表示が出来るソフトも必要です。

Fig.6 自家蛍光を持つマクロファージを含むリンパ節試料をプラスチック包埋、切片にした後イオンエッジングを行い観察（7）

トピックス
3）拡 張 性
本装置の拡張性を利用した例として、機械的に各種デバイスとの接続性に優れていることから、低真空鏡筒や低温凍結試料台の設置により、通常の、光顕用螢光試料作製法で作製された試料を観察できる可能性もあげられます。また、これまでの X 線分析装置などによる試料分析法だけではなく、鏡筒内に試料加工用マニュピレーターを設置することにより、例えば細胞膜を取り除きながら目的の螢光標識された細胞内小器官を見つけ出すことも可能になります。さらにレーザー光で試料を励起した際に出るラマン光を高感度カメラにて取得することにより、分子の構造解析に威力を発揮するラマン分光分析装置としても機能することが予想できます。

8. まとめ「ハイブリッドSEM」は、「多機能・多波長・同時・観察型分析装置」であります。しかしそればかりでなく、将来目的に合わせた各種バイオイメージングへの対応が十分に考慮され、広範囲で多目的なイメージング分析型 SEMとして高度に機能する事が期待されます。このような、同一試料の多角的観察により得られた画像を詳細に解析する事により、これまで得る事の出来なかった重要な情報を解読する事が可能になります。これまで述べてきたように、この「ハイブリッドSEM」は、医学生物学的研究のみならず、多方面の研究に大きく貢献する事が期待される、将来に向けた先端技術バイオイメージング装置なのです。

謝 辞Fig.7 螢光体 CL 像
PhD；T. Ishibashi, MD, PhD Cellular Migration Associated WithMacular Hole A New Method for Comprehensive Bird s-Eye
Analysis of the Internal Limiting Membrane LABORATORY SCIENCES ARCH OPHTHALMOL vol. 124, p1005-p1011, July2006【2006 年 発表】
T. Kanemaru, S. Takasu, M. Shigematu, and K. Nakamura Development of a hybrid SEM with a ﬂuorescence microscope
unit 第 16 回国際顕微鏡学会（IMC16 札幌）2006.9.3-8
K. Hirata, T. Kanemaru, M. Minohara, J. Kira Expression of nestin in glial cells of the rat olfactory system after olfactory
epithelium lesion 第 29 回日本神経科学大会（国立京都国際会館）2006. 7. 19 − 21【2005 年 論文】
S. Yoshida, F. Ishikawa, N. Kawano, K. Shimoda, S. Nagafuchi,S. Shimoda, M. Yasukawa, T. Kanemaru, H. Ishibashi, L. D.
Shultz, M. Harada Human Cord Blood‒Derived Cells Generate Insulin − Producing Cells In Vivo Stem Cells OriginalArticle vol. 23 P. 1409-1416 2005
中村桂一郎，近藤照義，太田啓介，小林正利，石橋義広，当間宏樹，金丸孝昭 特集：カハールの介在細胞 ICC と免疫応答細胞
顕微鏡 vol. 40, No. 3 別冊 P153-161 2005
【2005 年 発表】
金丸孝昭，高洲信一，重松 実，近藤照義，中村桂一郎 ハイブリ
ッド SEM の開発と応用 ― SEM と螢光顕微鏡― 日本顕微鏡学会 第 50 回シンポジウム福岡 （九大医学部百年記念講堂）
2005／11／1 − 2

本研究に使用しました、GFP陽性骨髄幹細胞移植マウス
は、現横浜理研ユニットリーダーの石川文彦先生からご提供いただきました。

九州大学中央分析センターニュース第95号

参考文献【2006 年論文】

F. Ishikawa, H. Shimazu, L. D. Shultz, M. Fukata, R. Nakamura, B.
Lyons, K. Shimoda, S. Shimoda, T. Kanemaru, K. Nakamura, H.
Ito, Y. Kaji, Puriﬁed human hematopoietic stem cells contributeto the generation of cardiomyocytes through cell fusion TheFASEB Journal, vol. 20 E11-E17, May 2006
T. Hisatomi, MD, PhD；H. Enaida, MD, PhD；T. Sakamoto, MD,PhD；T. Kanemaru, Mr.；T. Kagimoto, MD；I. Yamanaka, MD,PhD；A. Ueno, MD；T. Nakamura, MD, PhD；Y. i Hata, MD,（8）

平成19年１月30日発行

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