日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編

日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編「はじめて新型コロナウイルス検査を行う方のために」担当理事：宮地勇人（東海大学）
委員会委員
東田修二（東京医科歯科大学）、前川真人（浜松医科大学）、中谷 中（上野総合市民病院）、
仁井見英樹（富山大学）、下澤達雄（国際医療福祉大学）、副島隆浩（栄研化学株式会社）、谷本和仁（富士フイルム和光純薬株式会社）、八木慎太郞（富士レビオ株式会社）、飯田慶治（H.U.
フロンティア株式会社）、大場利治（タカラバイオ株式会社）、西田美和（ロシュ・ダイアグ
ノスティックス株式会社）、吉本倫子（シスメックス株式会社）、曽家義博（東洋紡株式会社）、
小林博幸（塩野義製薬株式会社）、丸瀬英明（株式会社島津製作所）、松下一之（委員長、千
葉大学）。
作成協力者
平井那知（浜松医科大学）、松永 楓（富山大学）、池尻 誠（三重大学）、石毛崇之（千葉大学）

初版（７．３１．２０２１）
改訂（１１．１．２０２１）

1日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編

目

次
ページ

目次 ・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・ ２
はじめに（宮地）・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・ 7
本解説書の目的、趣旨と対象（松下）
・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・ 7
新型コロナウイルス遺伝子関連検査の国内の現況（2021 年 10 月時点）
（松下）・・・

8

新型コロナウイルスの構造と PCR 検査の原理（松永）・・・・・・・・・・・・・・・ 12
日本遺伝子診療学会新型コロナウイルス検査の Q and A
総論：（東田、前川、副島、飯田、平井）・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・ 17
最重要 A
Q1) 核酸検査（PCR、LAMP など）の感度はと聞かれたら、何と答えるのが正しいですか。また、偽陰性のリスクを減らすためには、どのようなことに留意すれば良いですか。
Q2) 核酸検査（PCR、LAMP など）の特異度はと聞かれたら、何と答えるのが正しいですか。また、偽陽性のリスクを減らすためには、どのようなことに留意すれば良いですか。
Q3) 喀痰、鼻咽頭ぬぐい液、鼻腔ぬぐい液、唾液などの検体による操作や結果の違いはどうですか。
Q4) 核酸検査を行う際、核酸抽出エリア、試薬調製エリア、核酸増幅と検出エリアなど、エリア分けをする必要性はありますか。また、その理由は何ですか。
Q5）感染性のある検体の取り扱い方やバイオセーフティの心得を知りたいです。

重要 B
Q6）PCR 検査と抗原検査をどのように使い分けていますか。
Q7) 変異株を同定検出する意義は何ですか。また、NGS 全ゲノム解析が必要ですか。
Q8) クリーンベンチと安全キャビネットは、どのように使い分けをしますか。
Q9) ウイルス汚染の除去作業の要点は何ですか。
Q10) ウイルス汚染の除去作業に次亜塩素酸ナトリウムを使う際の注意事項は何ですか。

その他 C
Q11) 時間外の新型コロナウイルス検査をどのようにしていますか。
Q12) 検査室の掃除に関して留意すべきことは何ですか。
Q13) 遺伝子関連検査室の空圧管理の考え方を知りたいです。

2日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編

各論（実際の検査の現場での注意点）
分析前プロセス：検体の前処理工程について：（中谷、仁井見、八木、谷本、松永）・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・ 30
最重要 A
Q14) 検体保存液として不活化機能を持たない溶液（輸送液）を使用している場合には、検体の取り扱いにどのような注意が必要ですか。
Q15) 検体保存液として不活化機能を持つ溶液（輸送液）を使用している場合には、検体を感染物として取り扱う必要はないと考えても良いですか。
Q16）PCR 試薬の取り扱いにおいて、非特異増幅を予防する方法はありますか。
Q17）PPE 着用はどの程度まで、どの作業まで必要ですか。
Q18) 安全キャビネットとクリーンベンチの使用前準備（消毒方法）、使用中の注意（ゾーン分けや手袋を変えるタイミングなど）、使用後の注意（清掃方法）について教えてください。
Q19) 作業中に、着衣や手袋を交換する必要はありますか。（安全キャビネット外の作業では殆ど手袋を変えない人が多い）

重要 B
Q20) 検体保存液に入れていれば、室温で保存・輸送した検体であっても PCR 検査に利用可能ですか。
Q21) 検体（スワブ、輸送培地懸濁液、PBS 懸濁液、生理食塩水懸濁液）の保管条件と保管方法について教えて下さい。
Q22) 陽性コントロールを分注するピペットは、検体と同じピペットを用いて良いですか。
Q23) 陽性コントロールは、検体と同じ安全キャビネット内で取り扱って良いですか。
Q24) 出血を伴った検体は、どのように取り扱えば良いですか。

その他 C
Q25) 検体分注用ピペットは、複数の検体を分注する度にアルコール綿で拭きとり作業をする必要がありますか。
Q26) 試料の前処理に使用する容器は、滅菌したものを使用する必要はありますか。また、RNase
free は必須ですか。
Q27) 不活化剤入り輸送培地は使用可能ですか。
Q28) 粘性のある検体と試薬を混合する際に注意すべき点を教えてください。
Q29) チューブ等を氷冷する際に注意すべきことはありますか。
Q30）DNA と RNA の取り扱いでそれぞれ注意しなければならない点は何ですか。
Q31) 核酸抽出と精製の違いは何ですか。
Q32) ピペットの使用法で注意すべきことを教えてください。
Q33) ボルテックス・スピンダウンをする際の留意するべき点を教えてください。また、凍結乾燥品のチューブを開ける前にも、遠心が必要な理由は何ですか。
Q34) フィルター付きチップを使う理由は何ですか。また、疎水性でなければいけませんか。
Q35) 検体として不適切なものはどのようなものですか。

各論

分析プロセス:（リアルタイム）PCR の実施について：3日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編（下澤、大場、西田、小林、池尻） ・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・36
最重要 A
Q36) RT（逆転写）の精度管理はどうしますか。

重要 B
Q37) IC に添加された DNA を用いている検査試薬もありますが、検査上どのように考えれば良いですか。
Q38) 内部コントロールがない試薬の場合、増幅阻害を判断する方法はありますか。
Q39) 検体から抽出キットを用いて抽出した RNA を用いる検査と、RNA 抽出を行わず検体をダイレクトに RT-PCR にかける検査とで検出率を比べた場合、どのような差が出ますか。
Q40) 変異株が PCR 検査の感度や特異度に与える影響はどのようなものがありますか。
Q41）LAMP 法とはどのような方法ですか。また、唾液検体だと LAMP 法で偽陽性が出やすいというのは本当ですか。なぜ偽陽性になるのですか。
Q42) マルチプレックス PCR と一項目の PCR で感度に違いはありますか。
Q43) 通常の PCR と専用機での PCR だと検体接種量が異なりますが、感度に違いはありますか。

その他 CQ44）PCR 検査で機種によって速さが違うのは何故ですか。
Q45) ロシュ製品にはプロセスコントロール（RNA）が含まれていますが、これはどのような意味がありますか。
Q46) LAMP 法で反応が 30 分を超えたあたりで、陰性であるのにもかかわらずわずかに増幅することがありますが、その原理はどのようなものですか。

教科書レベルQ47) 試薬、検体等の量が極めて微量のため操作が難しいと感じています。また、PCR チューブの開閉等、細かい操作に慣れていないため苦労します。扱い方やコツなどはありますか。
Q48) （リアルタイム）PCR の原理がわかりません。
Q49）PCR は DNA を増やす技術と聞いています。新型コロナウイルスは RNA ウイルスのはずですが、何故 PCR で測定ができるのですか。

各論（分析後プロセス）：（松下、吉本、曽家、丸瀬、石毛） ・・・・・・・・・・・・40
最重要 A
Q50）PCR 検査の増幅曲線の縦軸と横軸の意味は何ですか。
Q51）Ct 値とは何ですか。
Q52）Ct 値に国際的な基準はありますか。
Q53) 同じ Ct 値を採用している検査は同じ感度を有していると言えますか。また、同じ RNA 溶液であれば、使用する PCR 試薬や機器が異なっても、Ct 値は同じになりますか。
Q54) 検体種や検体前処理等が違うのに、Ct 値で比較評価して良いのですか。Ct 値 40 は判定基準となるのですか。
Q55）PCR 検査の結果の判定について、例えば Ct 値 40 を超えて立ち上がりが見られた時に、再検、結果の解釈、臨床への報告の仕方についてのルールはありますか。
Q56）N1 だけまたは N2 だけ立ち上がった時の解釈はどうしたら良いですか。
Q57) 前日の検査で Ct 値 20 前後、当日検査で PCR が陰性になった時の対応はどうしたら良いです4日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編か。
Q58) 抗原定量検査で陽性と出た検体に、念のため PCR 検査をすると陰性と出ました。どのように扱ったら良いですか。また、その出現頻度はどのくらいですか。
Q59）PCR の Raw データを確認すると波形の乱れがある検体があります。どのような対策がありますか。
Q60) 偽陽性となりうる要因にはどのようなものがありますか。
Q61) 偽陰性となりうる要因にはどのようなものがありますか。
Q62) 他の検体の結果に比べて蛍光が全体的に低いのですが、問題ないですか。あるいは逆に他の検体の結果に比べて蛍光が全体的に高いのですが、問題はないですか。

重要 B
Q63) 同じ患者から採取された、唾液と鼻咽頭ぬぐい液ではウイルス量はどちらが多いですか。
Q64）Ct 値＞40 の低コピーのウイルスでは、他人へ感染させる可能性は低いですか。
Q65) 陽性になった患者が 1 か月経過後も、PCR 陽性となります。どの程度まで陽性と検出されますか。
Q66) 様々なキットを同時比較した成績はありますか。
Q67) 測定結果の判定と臨床的背景が一致しない場合は、どのように考えれば良いですか。
Q68) 抗原陽性、PCR 陰性の場合、どのような原因が考えられますか。また、その対応方法や出現頻度について教えて下さい。

その他 CQ69）cobas6800 では、操作画面に増幅曲線が表示されませんが、偽陽性に気がつくにはどうしたら良いですか。また、閾値の設定は PCR 装置の自動モードを利用しても良いですか。
Q70) 使用する製品によって、持ち込み患者検体量が異なるにもかかわらず、PCR 反応の部分の感度のみを比較することに意味はありますか。
Q71) Ct 値、Cp 値、Cq 値といろいろありますが、それぞれ何を示していて、何が異なるのですか。
Q72）PCR 後の廃棄物を捨てる際に注意すべき点は何ですか。
Q73）Ct 値と症状の有無や重症度に相関がありますか。
Q74) 試薬ごと、施設ごとの Ct 値をどのように比較すれば良いですか。
Q75）COVID-19 のスクリーニングとしての無症状者への SARS- CoV-2 核酸検査はどのように考えれば良いでしょうか。

最近のトピックス ・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・53
１．変異株の NGS による検査（石毛）２．検査部・検査室の現場スタッフ（初心者）へのトレーニングの実際（平井、松永、池尻、石毛）
３．不顕性感染者の下水による検査（小林）４．キット数の使用予測（副島）５．抗原定量検査と PCR 検査の比較（八木）６．空港検疫における PCR 検査の話題（飯田）
７．国内の COVID-19 感染症病原体検査能力とその活用について（八木）８．核酸の精度、精度管理物質、コンタミネーション防止（大場）5日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編

参考資料 1（解析法） ・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・73
参考資料 2（SARS-CoV-2 における RT-PCR-CE の原理と判定について） ・・・・・・82
参考資料 3（新型コロナウイルス感染症を指定感染症として定める等の政令等の一部改正について） ・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・85
参考資料 4（遺伝子関連検査・染色体検査の精度確保にかかる留意事項について） ・・ 87
参考文献 ・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・88
おわりに ・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・90

6日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編

はじめに
第１回の委員会（2021 年 5 月 14 日金曜日 WEB 開催）において、本委員会の活動目標
として、新型コロナウイルス感染症検査に従事する初心者向けの解説書と Q＆A の作成をすることになりました。

本解説書の目的、趣旨と対象
１．日本遺伝子診療学会の委員会として主に核酸増幅検査（PCR 検査と LAMP 法）を対象としました。
２．アカデミアや企業の担当者から、現場の臨床検査技師や医師が疑問に感じていること（Question: Q）を関係者にアンケートしました。業務上の重要性から最重要 A、重要
B、その他 C の３段階に分類しました。
３．上記アンケートをもとに、新型コロナウイルス検査に関して、総論、分析前、分析、分析後プロセスの４段階の（Q）を分類しました。各グループは４名の委員会委員と病院検査部の遺伝子関連検査を専門とする大学病院検査部の臨床検査技師を加えた５名で構成されます。
４．本委員会は新型コロナウイルス検査に関することを対象としますが、NGS 解析を含む
遺伝子関連検査全体の発展を目的とします。

7日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編

新型コロナウイルス遺伝子関連検査の国内の現況（2021 年 8 月時点）
わが国では、2020 年 2 月頃の新型コロナウイルス（SARS-CoV-2）の流行のはじめでは
PCR 検査は行政検査で行われていました。そのため臨床検査としての検査は国立感染症研究所から発出された情報の中で各検査室が SARS-CoV-2 に対する PCR 検査を立ち上げる
必要性がありました。SARS-CoV-2 の疫学的調査や早期の医療介入には、正確な PCR 検査の実施が重要とされ、国は様々な PCR 検査に基づく対策（登録衛生検査所の施設要件緩和、帰国者・接触者外来の設置、行政検査の公費負担、民間の登録衛生検査所への検査委託、必要な検査試薬、装置購入費の援助）を実施しました。その結果、わが国 1 日当たりの PCR
検査数は、第 1 波（1 月 16 日～5 月 31 日）の 26 万 9224 件から第 2 波（6 月 1 日～9 月
25 日）（国立感染症研究所）の 146 万 2249 件へと 5.43 倍に大幅に増加しました（下図）。

第 3 波までは活動性の高い若い世代から感染者が増加し、家庭内・施設内・病院内でのクラスターが発生し徐々に高齢者の割合が増加しました。国内では 2021 年 3 月頃から
COVID-19 に対するワクチン接種（ファイザー社製とモデルナ社製の２種類）が高齢者や医療関係者に対して開始されました。第 4 波以降の傾向として、65 歳以上の高齢者から始まったワクチン接種に伴い、感染者数は若い世代の割合が増え高齢者の割合は減少傾向が続いています。COVID-19 感染者数は 2021 年 7 月に入って増加し第５波となっています。７
月 14 日～20 日の新規感染者を年齢別にみると 20 代と 30 代が全体の約５割を占めています。COVID-19 感染症を抑え込んでいくためには、若年層へのワクチン接種をどのように進めていくかが課題です。2021 年８月現在、COVID-19 感染の「第 5 波」への危機感が高ま8日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編

りましたが、９月に入り新規患者数は減少に転じています。インド型（デルタ型）が猛威を振るっており、デルタ型が確認された国・地域は 130 を超えています。

COVID-19 に対するワクチン接種が開始されたことにより新規感染症者の重症化の抑制が期待されています。しかし感染者数が急増している若年者（20～40 歳代）への接種が課題となっています。また国内を含めて世界的にデルタ株が主流となっています。

9日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編※１ 国立感染症研究所（NIID）では、WHO と同様に、変異株を VOC と VOI に分類している。
2021.9.28 に NIID より変異株についての第 14 報が出され「懸念される変異株（VOC）」と「注目すべき変異株（VOI）」に加え「監視下の変異株（VUM）」が設定された。
（出典）<https://www.niid.go.jp/niid/ja/2019-ncov/2551-cepr/10743COVID-19-62.html>

国内での検出状況等を加味することから、分類は各国によって異なる。※２PANGO 系統（pangolineage）は、新型コロナウイルスに関して用いられる国際的な系統分類命名法であり、変異株の呼称として広く用いられている。括弧内の変異株名は、WHO ラベルである。
新型コロナウイルス感染症（変異株）への対応．厚生労働省 新型コロナウイルス感染症対策推進本部．<https://www.mhlw.go.jp/content/10900000/000793728.pdf＞より引用。

10日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編※感染性・重篤度は、国立感染症研究所等による日本国内症例の疫学的分析結果に基づくもの。ただし、重篤度について、本結果のみから変異株の重症度について結論づけることは困難。
※PANGO系統（PANGO Lineage）は、新型コロナウイルスに関して用いられる国際的な系統分類
命名法であり、変異株の呼称として広く用いられている。括弧内の変異株名は、WHOラベルである。（出典）国立感染症研究所、WHO。

最近の南米を中心とする拡大を受けて、WHO は 2021 年 6 月 14 日に新しい変異ウイル
ス株を「ラムダ」と名付け「注目すべき変異ウイルス（VOIs; Variant of Interest）」に指定しました。これまでの変異ウイルスのタイプには感染性が強くなると考えられている「N501Y」、ワクチン効果の低下や再感染のリスクが高くなると考えられている「E484K」などの変異があります。国内では 2021 年 7 月 23 日から東京 2020 オリンピックとパラリ
ンピックが行われました。
「第 5 波」は 10 月に入り新規患者数、重症者数ともには国内では減少傾向が続いています。今後懸念される「第６波」に備えてワクチンや検査体制の整備が急務となっています。このように 2020 年冒頭から 2021 年 10 月現在までの COVID-19の感染状況を振り返りますと、SARS-CoV-2 遺伝子の検査の精度管理への対応は日本遺伝子診療学会としても重要かつ喫緊の課題です。本解説書および Q＆A 集が、はじめて SARSCoV-2 関連検査に携わるすべての検査スタッフに役立てば幸いです。なお、本解説書の内容を引用する際は「日本遺伝子診療学会 新型コロナウイルス感染症委員会」からの引用であることを明記していただけますと幸甚です。
（松下）

11

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新型コロナウイルス感染症検査委員会編

新型コロナウイルスの構造と PCR 検査の原理（松永）

図１：新型コロナウイルス（SARS-CoV-2）の構造と RNA ゲノム

12

日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編

図２：SARS-CoV-2 核酸増幅の流れ（イメージ）。検体採取、RNA 抽出、RT-PCR、測定結果の解釈のステップに分かれる。
13

日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編

図３：SARS-CoV-2 のリアルタイム RT-PCR の原理と判定について１
逆転写反応の過程を示す。ヒト内在性物質として DNA を用いる試薬と RNA を用いる試薬がある。両者では、逆転写反応の最初のステップを評価できる範囲が異なるため注意が必要である。
14日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編

図４：SARS-CoV-2 のリアルタイム RT-PCR の原理と判定について２
二重鎖 DNA の熱変性、プライマーのアニーリング、伸長反応、蛍光測定の過程を示す。

15日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編

図５：SARS-CoV-2 のリアルタイム RT-PCR の原理と判定について３
測定結果の解釈。N1、N2 のシグモイドカーブ、Ct 値、IC の反応性などを総合的に解釈する。必要であれば判定保留として再検査を検討する。
16

日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編

日本遺伝子診療学会新型コロナウイルス検査の Q and A
総論：東田、前川、副島、飯田、平井
最重要 A

Q1）核酸検査（PCR、LAMP など）の感度はと聞かれたら、何と答えるのが正しいですか。また、偽陰性のリスクを減らすためには、どのようなことに留意すれば良いですか。
A1）感度には分析感度と診断感度があるので、分けて理解する必要があります。ISO 15189の 5.5.1.3 の Notes にも分析感度と診断感度が記載されています。
分析感度とは、測定装置における反応変化（分析物の変化）を対応する分析物で割ったものと定義されます 1）。しばしば、「分析感度」または「感度」は、「LoD」、「下限 LoD」、または「検出限界」と互換性をもって使用されます。新型コロナウイルス核酸検査に関する WHO
提案事項、FDA ガイダンス文書において分析感度と LoD が併記されています。検出限界
LoD とは、分析対象物質が定量的でないが存在するということが高い信頼度で言える最小量（値）を指します。したがって、SARS-CoV-2 の分析感度はコピー/μL で示すべきです。
PCR で用いられる Ct 値は相対的なものであるためコピー数の代用として使用すべきではありません 2）。また、例えばメーカーが独自のキャリブレータを使っている場合、PCR 製品 A
キットの１コピー/μL は別の PCR 製品 B キットの１コピー/μL と等しくなるとは限りません。A キットと B キットの比較をする場合は、コピー数既知の参照物質から値付けする必要があります。
なお、LAMP 法で得られる結果は、あくまでも陽性、陰性の定性であり、得られた結果（Tt
値：Threshold time 値）からコピー数を算出することはできません。一方、診断感度は、
一般的に感度と特異度、ROC カーブとセットになって議論される感度を示しており 3）、この設問でも「偽陰性のリスクを減らすためには」と続くことから、診断感度を取り上げているものと考えられます。すなわち、病気がある群での検査の陽性率（真陽性率）を感度、病気がない群での検査の陰性率（真陰性率）を特異度と呼ぶ場合の、その感度のことです。当初、COVID-19 診断目的での PCR の感度は約 70％と言われていましたが、当然ながら検体採取の時期、発症との関係で陽性率は変化するため、一概には言えません。また、PCR 検査の各プロセスが適切に行われたか、測定法や測定試薬・機器によっても陽性率は変わります。
偽陰性のリスクを減らすためには、つまり陽性率を上げるためには以下の要因に留意して、
適切なタイミングで適切に検査を行うことが重要です。
 分析前プロセス· 検体の採取：鼻咽頭スワブの感度が全般的に高く適切な方法で検体を採取する必要があります。
· 検体採取のタイミング：発症前 1 日から発症後 3 日の偽陰性率が低い（感度が高い）とされています。

17日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編· 検体の取り扱い：標的となる RNA が分解しないよう、適切な取り扱い、保管方法で対応します。基本的には可及的速やかに検査に供しますが、必要に応じて、ウイルス不活化剤や RNA 安定化剤を使用します。また、保管や輸送する場合は、保証された方法
で行うことが必要です。
 分析プロセス· 分析法の種類：PCR 検査試薬はたくさんあるため、妥当性を確認し分析感度の高いものを選びます。流行している変異株でも検出できることを確認しておきます。
· 分析法の質管理：内部標準の増幅を確認し、PCR の阻害が生じていないことを確認します。適度に内部精度管理用試料を測定して適正に測定されていることを確認します。可能な限り信頼性のある技能試験に参加して測定法の妥当性を確認します。
 分析後プロセス· 分析結果の解釈と報告を間違えないようにします。
· 臨床所見など、他の患者情報と矛盾がないかどうか、臨床側との情報交換を欠かさないことが重要です。場合によっては再測定もしくは再検査を行います。
参考資料
１）日本臨床検査標準協議会（JCCLS）、遺伝子関連検査標準化専門委員会．新型コロナウ

イルス核酸増幅検査の精度管理ガイダンス．日本臨床検査標準協議会，2021，p58．
２）東田修二．新型コロナウイルス検査の感度・特異度と結果報告の標準化．日本臨床検

査医学会誌 2021；69: 405-409．
３）三宅一德．臨床検査の偽陽性と偽陰性について（日本臨床検査医学会編。一般の方、非医療者の方へ）.
<https://www.jslm.org/committees/COVID-19/20200427.pdf>，（2021.10.31
最終参照日）（前川、副島）Q2）核酸検査（PCR、LAMP など）の特異度はと聞かれたら、何と答えるのが正しいですか。また、偽陽性のリスクを減らすためには、どのようなことに留意すれば良いですか。
A2）感度と同様に特異度にも分析特異度と診断特異度があります。分析特異度（分析特異性）では干渉物質と交差反応を確認する必要があります 1）。SARS-CoV-2 核酸検出の場合、干渉物質には、サンプリング時に生じた干渉や、検体中の成分自体（様々な潜在的な薬物の干渉を含む）などが含まれます。交差反応は、主に一般的な呼吸器感染症の病原体がこの検査に交叉干渉を及ぼすかどうかを考慮します。基本的には測定試薬の添付文書に記載されて18

日本遺伝子診療学会
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います。一方、診断特異度は病気がない群での検査の陰性率（真陰性率）を特異度と呼びます 2）3）。
偽陽性のリスクを減らす、すなわち特異度を上げることであり、有病率が低い集団で検査する場合の陰性的中率（陰性予測値）を上げるために極めて重要です。
偽陽性のリスクを減らすためには、特に以下の要因に留意して適切に検査を行います。偽陰性と異なり、分析プロセスにおける要因が大部分を占めます。
 分析前・分析プロセス· 分析法の種類：PCR 検査試薬は多数あるため、妥当性を確認し分析特異性の高いものを選びます。流行している変異株でも異常反応が生じないことを確認しておきます。
· 分析法の質管理：内部標準の増幅が適正に行われていることを確認し、PCR の異常反応が生じていないことを確認します。適度に内部精度管理用試料を測定して、適正に測定されていることを確認します。可能な限り、信頼性のある技能試験に参加して測定法の妥当性を確認します。
· 検体の取り違え（全プロセスで）に留意します。
· 陽性試料のコンタミネーションに留意し、水などの陰性対照を同じバッチで測定することが重要です。
· PCR 産物の入った容器を開けないようにします（キャリーオーバーコンタミネーショ
ンのハイリスク）。
· 環境中のウイルスの破片の試料への混入に留意します。
· 一度感染したヒトの体内に残存した不活化ウイルス断片を検出している可能性があることに留意します。
· PCR の増幅曲線を視認できる場合は、非特異増幅（通常は Ct 値が大きい）に留意して増幅曲線を確認することが大切です。
 分析後プロセス· 分析結果の解釈と報告を間違えないよう確認します。
· 臨床所見など、他の患者情報と矛盾がないかどうか、臨床側との情報交換を欠かさず、
場合によっては、再測定もしくは再検査を行い確認します。
なお、LAMP 法での非特異反応に対しては、以下のことに留意してください。
・試薬の添付文書に従った手順で行います。
氷上での検体や試薬の分注時に、十分に温度が下がっていない、もしくは室温での操作が想定より長い場合、非特異反応が出現する可能性があります。
・非特異反応を低減する前処理を行います。
唾液検体を用いる場合、前処理（①PBS 希釈遠心、②スプタザイムまたはプレソルブ
処理）を実施することで、非特異反応の影響が低減されます（栄研化学社内データ）。
①の場合、唾液 500µL に対して等量の PBS(-)を添加懸濁し、20,000×g、4℃、1019日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編

分間遠心後の上清 200µL、②の場合、唾液 200µL に対してスプタザイムまたはプレソルブ 200μL を添加懸濁し、室温で 5 分放置後の唾液 200µL、それぞれを Loopampウイルス RNA 抽出試薬に添加して RNA を抽出します。
参考資料１）日本臨床検査標準協議会（JCCLS）、遺伝子関連検査標準化専門委員会．新型コロナウ
イルス核酸増幅検査の精度管理ガイダンス．日本臨床検査標準協議会，2021，p58．
２）三宅一德．臨床検査の偽陽性と偽陰性について（日本臨床検査医学会）.
<https://www.jslm.org/committees/COVID-19/20200427.pdf>，（2021.10.31
最終参照日）
３）東田修二．新型コロナウイルス検査の感度・特異度と結果報告の標準化．日本臨床検査
医学会誌 2021；69: 405-409．
（前川、副島）Q3）喀痰、鼻咽頭ぬぐい液、鼻腔ぬぐい液、唾液などの検体による操作や結果の違いはどうですか。
A3）PCR 検査を対象として説明します。
検体としては下気道に本ウイルス量が多いことが報告されていることから、できる限り喀
痰などの下気道由来検体を用いますが、採取が難しい場合は鼻咽頭ぬぐい液を用います 1）。
鼻腔ぬぐい液や唾液を用いても検出できますが、鼻咽頭ぬぐい液よりも感度が低いことが報告されています。

【喀痰検体の操作】
前処理方法にはジチオトレイトール（dithiothreitol, DTT）溶解法または PBS(-)懸濁法があります。
 DTT 溶解法
喀痰に対して 1 容量の 10%DTT（DNase 処理済、用事調整、PBS(-)希釈）を添加し懸濁、室温で 15 分間インキュベート、次に DNase で処理した試料を RNA 精製に用いる被検
検体とします。
本法は、喀痰内部に閉じ込められたウイルスも浮遊させるため、ウイルス RNA
抽出の高効率化が期待できます。しかし、喀痰に含まれるゲノムなどの夾雑物も同時に溶出されることになるため、DNase 処理や溶解液の希釈などの処理を行うなどして、ウイルス
RNA の抽出効率に影響しないようにすることが重要です１）。
 PBS(-)懸濁法
喀痰に対し 1～3 容量の PBS(-)を添加し懸濁します。次に 20,000 ×g、30 分間、4℃で遠心後の懸濁液上清を RNA 精製に用いる被検検体とします。本法は、喀痰表面に存在する
20

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新型コロナウイルス感染症検査委員会編

ウイルスを浮遊させることは可能ですが、喀痰内部に閉じ込められたウイルスまでは効率よく浮遊させることができないと考えられます。さらに PBS(-)等の懸濁液を多く添加することによって喀痰そのものが希釈されてしまうため浮遊ウイルス濃度が薄くなり、ウイルス
RNA の抽出効率が低くなる可能性があります。

【唾液検体の操作】滅菌容器（10～50mL 遠沈管等）に 1～2mL 程度の唾液を自己採取してもらいます（5～10 分間かけると 1～2mL 採取できます）。唾液は粘性が高いため検体取扱時のピペット操作が困難なことがあるため、検査にあたっては、唾液に対して容量で 1～3 倍量（唾液により粘性が異なるので、適宜、容量を変更）の PBS(-)を添加し、ボルテックスミキサーおよび激しい転倒混和により懸濁し、遠心後、上清を用いて核酸抽出を行います２）。

【鼻咽頭ぬぐい液、鼻腔ぬぐい液の操作】
鼻咽頭ぬぐい液を採取する場合は滅菌綿棒を鼻孔から挿入し、上咽頭を十分にぬぐいます（自己採取不可）。
鼻腔（前鼻孔）ぬぐい液を自己採取する場合は医師等の監視の下で採取します。綿棒を前
鼻孔に 2～3cm 程度挿入し、5～10 秒ほどかけて鼻粘膜に沿って綿棒を 5 回転させ、5 秒程度静置し湿らせます。
それぞれのぬぐい液はウイルス輸送液（UTM、VTM）、PBS、生理食塩水のいずれかが１～３ｍL 添加された容器に検体採取後の滅菌綿棒（フロックスワブやレーヨンやポリエステ
ルの材質を含む）が投入された状態であり、容器内の検体浮遊液をそのまま RNA 精製に用いる被検検体とします。

【核酸増幅検査に用いる検体の輸送までの保管方法】
検体採取後、可能な限り速やかに冷蔵（4℃）に保管し、輸送開始までに 48 時間以上かかる場合は凍結保存（可能であれば-80℃以下）します。

【結果の違い】厚生労働省は鼻咽頭ぬぐい液を感染研法で測定した値と唾液を感染研法、ダイレクト PCR法、LAMP 法で測定した値の一致率を検証した結果、感染研法 84.1％（74/88）、ダイレク
ト PCR 法（3 種類の試薬キットの結果）①78.4％（69/88）、②81.8％（72/88）、③68.2％（60/88）、LAMP 法 72.7％（64/88）と報告しています 3）。鼻腔ぬぐい液については感染研法を用いて鼻咽頭ぬぐい液との比較を行ったところ、陽性一致率は 80.0％（24/30）、陰性一致率は 100％（5/5）と報告しています 4）。つまり、鼻咽頭ぬぐい液を用いた PCR の検査で陽性、鼻腔ぬぐい液や唾液では陰性と判定されることがあり得ます。ただし、個々の症例によっては鼻腔ぬぐい液や唾液で陽性、鼻咽頭ぬぐい液で陰性ということも起こり得るので判定には注意が必要です。
21日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編

参考資料
1） 国立感染症研究所．2019-nCoV （新型コロナウイルス）感染を疑う患者の検体採取・輸送マニュアル．2021/03/19 更新版
2） 国立感染症研究所．病原体検出マニュアル 2019-nCoV Ver.2.9.1 令和 2 年 3 月 19日3） 厚生労働省．唾液を用いた PCR 検査に係る厚生労働科学研究の結果について，2020
年 6 月 30 日
4） 新型コロナウイルス感染症（COVID-19）およびインフルエンザの診断における鼻咽頭
拭い液・鼻かみ鼻汁液・唾液検体を用いた迅速抗原検査の有用性の検証のための研究班
研究代表者 倭正也：鼻腔拭い液検体を用いた新型コロナウイルス検査の有用性に関する中間報告 2020 年 9 月 15 日（飯田）

Q4）核酸検査を行う際、核酸抽出エリア、試薬調製エリア、核酸増幅と検出エリアなど、
エリア分けをする必要性はありますか。また、その理由は何ですか。
A４）各作業におけるコンタミネーションを回避・防止するために、エリア分けをする必要があります。理由は、コンタミネーションを起こすことで検査室が汚染され、検査結果の誤判定につながるからです。また、そのエリアの清掃・除去には多大なる労力が必要となり、しばらく検査を中止しなければならないことを避けるためにも必要です 1）。
· なお、コンタミネーションには、取り扱う試料や DNA の汚染（クロスコンタミネーション）と増幅産物の汚染（キャリーオーバーコンタミネーション）があります 2）。
· クロスコンタミネーションの原因は、前処理から核酸分注工程での陽性検体や陽性コン
トロールからの陰性検体および陰性コントロールへの汚染、使用試薬、使用器具（ピペット、チューブ）の汚染と様々です。
· キャリーオーバーコンタミネーションの原因は、増幅産物のエアロゾルによる汚染です。
参考資料
1）横田浩充．遺伝子検査室の立ち上げ. Medical Technology 2012；40：1564-1570．
2）日本臨床検査標準協議会（JCCLS），遺伝子関連検査標準化専門委員会．新型コロナウイ
ルス核酸増幅検査の精度管理ガイダンス. 日本臨床検査標準協議会，2021．P69．
（副島）Q5）感染性のある検体の取り扱い方やバイオセーフティの心得を知りたいです。
A5）バイオセーフティとは危害（生物災害）対策を示し、検査室においては従事者の感染防止対策および環境汚染防止対策を目的として、病原体等による曝露や漏洩を予防するためのリスクマネジメントを行うことです。つまり、病原体等を自分に入れない、仲間にうつさな
い、検査室から出さない、自分と仲間と社会を守る行動規範です。
22

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新型コロナウイルス感染症検査委員会編

SARS-CoV-2 はバイオセーフティレベル（BSL）１～４のうち、感染疑い患者由来検体はBSL2、病原体は BSL3 の取り扱いになっています（不活化した SARS-CoV-2 は BSL1 の取り扱いでよい）。したがって、新型コロナウイルス検査は BSL2【P2 レベルの設備（安全キャビネット（セーフティーネット）
・物理的封じ込め装置（区域管理と検査室外から内への内向き気流）・二次封じ込め対策（BSL１に必要な設備・手洗い用の流し台・オートクレー
ブ）・PPE（ガウン・手袋・マスク・必要に応じて顔と目の保護）】と BSL3【P3 レベルの設備（エアロックまたは前室を介した自動閉鎖式の両開き戸・検査室内を陰圧に保つ）・PPE（BSL2 に準拠）】の対応で行う必要があります。特に、SARS-CoV-2 が不活化されるまで
は BSL2 以上の安全キャビネットの中で行わなければなりません。
検査後は、安全キャビネット、機器、作業台、器具等を適切な消毒薬で除染し、安全キャ
ビネット等は可能であれば UV 照射する必要があり、PPE は感染性廃棄物として廃棄、もしくはオートクレーブ処理する必要があります。新型コロナウイルス検査だけでなく日々の検査業務でも、適切な PPE の着用（検査前にしっかり着用することはもちろんですが、検査中でも適宜手袋を交換するなど）と手指消毒（検査前と検査後だけでなく、検査中に手袋を交換する際なども行うこと）が重要です。
参考資料
・「新型コロナウイルス核酸増幅検査の精度管理ガイダンス」．公益社団法人日本臨床検査標準協議会（JCCLS），2021．
・新型コロナウイルスの消毒・除菌方法について（厚生労働省・経済産業省・消費者庁特設ページ），<https://www.mhlw.go.jp/stf/seisakunitsuite/bunya/syoudoku̲00001.html>
（平井）
重要 B

Q6）PCR 検査と抗原検査をどのように使い分けていますか。
A6）以下のような特徴に基づいて使い分けます。

【PCR 検査と抗原検査の特徴】
抗原検査は主に免疫クロマトグラフィー（Immunochromatography：IC）技術を用いた抗原定性検査と化学発光酵素免疫測定法（CLEIA）と電気化学発光免疫測定法（ECLIA）などを原理に用いた抗原定量検査に分かれます。IC 法は特別な装置を必要としない、短時間で結果が得られる、検査場所の制限が少ないなどの長所がありますが、PCR 検査や抗原定量検査よりも感度が低いことから、結果の解釈には注意が必要です。また、検体抽出の操作が不十分な場合、結果に影響を及ぼす可能性があるため、操作上の注意点として検体採取用綿棒の綿球を処理液内で十分に揉み解すこと、処理液から取り出す際には綿球から液をしぼり出すことなどが注意点とされています１）。抗原定量検査は PCR 検査と同等で実用的な検査法ですが、測定対象とする物質が PCR 検査とは異なることから、検査実施のタイミングな23日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編

どによっては双方の結果に乖離が生じることを認識しておく必要があります。

【PCR 検査および抗原検査の使い分け】
下表に検査法ごとに使用できる検体および検査対象者を示します。
 発症から 9 日目以内
鼻咽頭、鼻腔、唾液が PCR 検査、抗原定量検査で適用しますが、抗原定性検査では鼻咽頭、鼻腔が適用され、唾液は適用されません。
 発症から 10 日目以降
ウイルス量が低下するため PCR 検査、抗原定量検査とも唾液のみ推奨されません。抗
原定性検査は鼻咽頭、鼻腔で使用が可能ですが陰性の場合は必要に応じて PCR 検査か抗原定量検査の追加が推奨されます。唾液については適用されません。
 無症状者
PCR 検査、抗原定量検査で鼻咽頭、唾液が適用されますが、鼻腔は両検査ともに推奨されません。唾液は自己採取が可能で、医療従事者への感染リスクを低減させることができるため空港検疫、スポーツイベント開催前、濃厚接触者などの多人数の無症状者を検査する場面で用いられています。
抗原定性検査は、鼻咽頭、鼻腔を用いての確定診断としての使用は推奨されませんが、感染拡大地域の医療機関や高齢者施設などにおいて幅広く検査を実施する際のスクリー
ニング検査として鼻咽頭、鼻腔を使用することが可能とされています。ただし、結果が陽性の場合であって医師が必要と認めれば核酸増幅検査や抗原定量検査による確認が必要となります１）。唾液については適用されません。

24

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表. 検査法ごとに使用できる検体および検査対象者（出典）新型コロナウイルス感染症（COVID-19）病原体検査の指針 第 4.1 版。国立感染症研究所、国立国際医療研究センター、全国保険所長会、地方衛生研究所全国協議会、日本感染症学会、日本環境感染学会、日本臨床衛生検査技師会、日本臨床検査医学会、日本臨床
微生物学会、厚生労働省健康局結核感染症課。2021 年 10 月 5 日．
（飯田）

Q7) 変異株を同定検出する意義は何ですか。また、NGS 全ゲノム解析が必要ですか。
A7）変異株は重症化率が高いという知見および臨床経験や免疫逃避が示唆されるという報告があるものの、変異株が多数を占めつつある現在の流行状況を鑑みると、リアルタイムに変異株に対する検査を行うのは行政レベルにおける疫学調査目的や医療機関における研究・調査目的での変異株スクリーニング検査では必須ですが、臨床に報告する意義は大きくないものと考えられます 1）。現在、行政レベルで実施されている変異株スクリーニング検査は25

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新型コロナウイルス感染症検査委員会編

SARS-CoV-2 核酸増幅検査にて得られた陽性検体から Spike タンパクのアミノ酸変異を、
リアルタイム 1-step RT-PCR 法により同定しますが、変異を本検査で検出できたとしても、変異株を特定することはできません。ウイルスの塩基配列に生じた変異箇所の特定には、ウイルスゲノムのシークエンス解析が必須となります。
参考資料
1）日本臨床検査医学会 新型コロナウイルスに関するアドホック委員会．新型コロナウイル
ス変異株検査に対する考え方. 2021 年 5 月 27 日（飯田）

Q8）クリーンベンチと安全キャビネットは、どのように使い分けをしますか。
A8）クリーンベンチと安全キャビネットは、以下のように使い分けます。

【クリーンベンチ】· 装置外→装置内へ汚染の侵入を防ぐ装置です。
· 試薬の精製等で用います。クリーンベンチは UV ランプのついた層流式クリーンベンチを用いることで PCR 実験に適した無塵の環境が得られます 1）。
· 室内に不要なものは持ち込まず、常にすっきりとした状態にします 1）。
· 使用前後の保守管理は、クリーンベンチ検査機器・器具保守管理標準作業書を参照して行います。また、追加として使用後には 0.5%次亜塩素酸で拭いた後、十分な、水拭きをします 1）。

【安全キャビネット】· 装置内→装置外への汚染漏出を防ぐ装置です。
· 感染性を有する検体の前処理および抽出作業には、生物学的安全キャビネットを用います。生物学的安全キャビネットは目的菌またはウイルスによってクラスタイプが異なり
ます 1）。
· 臨床検査では概ねクラスⅡタイプのものを用いることが多いです。クラスⅡの生物学的安全キャビネット内部は常に清浄に保持します。クラスⅡの生物学的安全キャビネット
内にはエアロゾル発生を回避するためスピンダウン等に使用する小型遠心機や不必要な器具は持ち込まないようにします 1）。

· クラスⅡの生物学的安全キャビネットの保守管理は、使用前は 70%エタノールにて清拭し、使用後は危害対策用キャビネット MHE-91AB3 検査機器・器具保守管理標準書を参照して行います 1）。
参考資料
1）日本臨床検査標準協議会（JCCLS），遺伝子関連検査標準化専門委員会．新型コロナウ
イルス核酸増幅検査の精度管理ガイダンス 2021．日本臨床検査標準協議会．P70．
（副島）26

日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編

Q9）ウイルス汚染の除去作業の要点は何ですか。
A9）この質問に対しては二つの観点から回答します。
まず、環境表面などのウイルス汚染除去には、次亜塩素酸ナトリウム 0.05％を使用するとされますが、表面消毒には 0.1％、汚染面の消毒には 1.0％の報告もあります。また、遺伝子関連検査の場合、感染防止だけでなく、コンタミネーション防止のために飛散した可能性のある核酸の破壊も必要なことから、クラスⅡの生物学的安全キャビネット、機器、作業台、器具などの一般的な清拭には 0.05～0.1％、汚染時の清拭には 0.5～1.0％で使用します。ただし、クラスⅡの生物学的安全キャビネットの作業台表面や内部壁面など金属部分は腐食を避けるため、除染後は水で改めて清拭する必要があります 1）。
次に、SARS-CoV-2 の核酸増幅検査におけるウイルス（核酸）汚染、すなわち核酸増幅検
査でのコンタミネーションが生じた場合の除去作業について記載します。コンタミネーショ
ンには、ウイルス核酸の汚染（クロスコンタミネーション）と増幅産物の汚染（キャリーオ
ーバーコンタミネーション）があります 2）。特に後者は PCR に共通する大きな課題であり、偽陽性の原因の一つとされます。予防法は、適切な作業環境と手順、陰性対照の確認、操作者の技術研修などが挙げられます。コンタミネーション除去には、まずコンタミネーションの確認（早期診断・早期対処が重要）と原因の解析が肝要です。作業者の手を介して多くの箇所に拡がっている可能性が高いため、できるだけ手を使わず、ピンセットなどを使用すること、作業の終了時には触れる箇所を次亜塩素酸ナトリウムで念入りに清拭することが重要です 3）。

 単発なコンタミネーションの場合① 考えられる原因を一つ一つチェックし、対処します。
② 試薬へのコンタミネーションが疑われる場合は、新しいものに換えます。
③ 実験台や器具類は 0.5～1.0％の次亜塩素酸ナトリウムで清拭後に十分な水拭きをします。
④ ピペット、ピペットチップ、チューブ類も新しいものに交換します。
 検査結果が広範囲で異常を呈したコンタミネーションの場合① コンタミネーションを起こした部屋を閉鎖します。
② 代用できる作業場所がある場合は、そちらで行います。その場合、閉鎖した実験室からのものは使用せず、試薬や器具はすべて新しいものを使用します。
③ 化学的方法での DNA 分解：床および周辺等、作業領域（実験台、クラスⅡの生物学的安全キャビネット、クリーンベンチ等）をそれぞれ文献記載の濃度で次亜塩素酸ナトリ
ウムにより処理します。この場合、金属表面が腐食しないように十分な水拭きをするのを忘れないようにします。
④ 部屋やベンチ内など UV 照射可能な領域では UV 照射によって核酸を破壊します。この場合、効果があるのは UV が照射される部分のみであり、陰になる場所や染み込んでい27日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編るものに対しては効果がないことに留意します。また、人がいる時には照射しないのはもちろんです。
⑤ PCR Clean（フナコシ）などの核酸やアンプリコンなどを除去する市販の除去剤の使用も必要に応じて行います。
最も重要なのは、繰り返しになりますが、起こってから対応するよりも、コンタミネーシ
ョンが起こらないようにすることです。
参考資料
１）日本臨床検査標準協議会（JCCLS）．遺伝子関連検査標準化専門委員会. 新型ウイルス核酸増幅検査の精度管理ガイダンス 2021．日本臨床検査標準協議会，p40，p69-74．
２）川上大輔．新型コロナウイルスの PCR 検査～原理からヒットホールとその対策まで～．
ぶんせき

2020 年 10 月号：p359-365．

<https://www.jsac.or.jp/bunseki/pdf/bunseki2020/p359.pdf>（前川）Q10）ウイルス汚染の除去作業に次亜塩素酸ナトリウムを使う際の注意事項は何ですか。
A10）0.5～1.0%に次亜塩素酸ナトリウムを希釈し器具等についたウイルスを除去します。
大切なことは、しっかり汚染除去対象物全体を浸漬することです。空中に出ている部分は汚染除去できないためです。除去作業中は皮膚や目に付着させないよう注意し、安全キャビネ
ットは発生する塩素を吸い込まないようにファンを稼働させておきます。1～2 分ほど処理
し、ウイルス除去作業後は、金属に対して腐食性があるため、十分水拭きする必要があります。
参考資料
・「新型コロナウイルス核酸増幅検査の精度管理ガイダンス」．公益社団法人日本臨床検査標準協議会（JCCLS）．2021．
・新型コロナウイルスの消毒・除菌方法について（厚生労働省・経済産業省・消費者庁特設ページ），<https://www.mhlw.go.jp/stf/seisakunitsuite/bunya/syoudoku̲00001.html>
（平井）
その他 C

Q11）時間外の新型コロナウイルス検査をどのようにしていますか。
A11）新型コロナウイルス検査には核酸検査、抗原検査（定量・定性）、抗体検査がありま
すが、随時（時間外も含めて）核酸検査を行う施設は数少ないのが現状です。時間外に抗原検査（定量・定性）を行った場合、新型コロナウイルス感染症を強く疑うときは、後日核酸検査を行うことを勧めます。
28日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編

多くの病院検査室では、核酸検査と抗原検査で複数の測定系を準備し、検体も鼻咽頭ぬぐい液・唾液・鼻腔ぬぐい液を使い分けて、対象者の COVID-19 の検査前確率に応じてフローチャートを設けて検査を行っていると考えられます。その際の精度保証も含めて、自施設の状況に応じた体制作りが必須です。
参考資料
・2020 年度全国検査部長・技師長会議 アンケート調査結果について．一般社団法人日本
臨床検査医学会 村上正巳，山田俊幸，今福裕司．2020，<https://www.jslm.org/about/zenkoku/20200828.pdf>
・令和 2 年度厚生労働行政推進調査事業費補助金（地域医療基盤開発推進研究事業）総括
研究報告書

検体検査の精度の確保等に関する研究研究代表者 矢冨 裕，<https://mhlw-grants.niph.go.jp/project/148878>
・令和 2 年度厚生労働行政推進調査事業費補助金（地域医療基盤開発推進研究事業）「検体
検査の精度の確保等に関する研究」（研究代表者 矢冨 裕）。分担研究報告

新型コロ

ナウイルス検査の実施施設における精度管理に関するアンケート調査 研究協力者 東田修二

202022035A-buntan14.pdf。

<https://www.mhlw.go.jp/seisakunitsuite/bunya/hokabunya/kenkyujigyou/hojo
kin-koubo-2020/gaiyo/19.html>
・令和 2 年度厚生労働行政推進調査事業費補助金（地域医療基盤開発推進研究事業）「検体
検査の精度の確保等に関する研究」（研究代表者 矢冨 裕）。分担研究報告

全国検査部長・技師長会議における COVID-19 関連検査のアンケート調査の結果と分析 分担研
究者

村上正巳 202022035A-buntan15.pdf。

<https://www.mhlw.go.jp/seisakunitsuite/bunya/hokabunya/kenkyujigyou/hojo
kin-koubo-2020/gaiyo/19.html>
・新型コロナウイルス感染症検査の使い分けの考え方

一般社団法人日本臨床検査医学会

新型コロナウイルスに関するアドホック委員会，<https://www.jslm.org/committees/COVID-19/20210127-1.pdf>
・新型コロナウイルスルス感染症（COVID-19）病原体検査の指針

第 4 版，<https://www.mhlw.go.jp/content/000790468.pdf>（平井）Q12）検査室の掃除に関して留意すべきことは何ですか。
A12）安全キャビネット、作業台、機器や器具の清拭は、検体の飛散による作業者の感染防止、および、核酸による PCR 測定系への汚染の観点から行います。後者には検体によるクロスコンタミネーションと、核酸増幅産物によるキャリーオーバーコンタミネーションがあります。目的に応じて、以下の消毒薬を用います。金属部分に次亜塩素酸ナトリウムを使用した場合には、腐食を避けるため、水で改めて清拭します 1)。
29日本遺伝子診療学会
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目的

消毒薬

感染防止のための一般的な清拭

70～95%エタノール、0.05%次亜塩素酸ナトリウム

汚染時の清拭、核酸の破壊

0.5～1%次亜塩素酸ナトリウム作業終了後、残余検体、検体が付着したチューブやチップ、ディスポーザブルの個人防護具は、施設の規則に従い、ビニール袋に入れて感染性廃棄物として廃棄、もしくは、高圧蒸気滅菌（オートクレーブ）をかけます。チップ類は次亜塩素酸ナトリウム液を入れた容器にネットを被せておき、次亜塩素酸ナトリウム液に浸かったチップをネットごと回収して廃棄してもよいです。
核酸増幅産物の感染性はないため、オートクレーブは排気とともにアンプリコンを部屋中に拡散させる原因となるため「やってはいけない」といえます。増幅産物の飛散によるキャ
リーオーバーコンタミネーションが起きないよう気をつける必要があります。検査室の床は、検体をこぼしたりすることがなければ、通常通りの掃除でよいです。検体をこぼして拭き取る場合は、個人防護具（ガウン、グローブ、サージカルマスクまたは N95 マスク、アイシールドまたはフェイスシールド）をつけて、汚染時の清拭を行います。
参考資料
1) 日本臨床検査標準協議会（JCCLS），遺伝子関連検査標準化専門委員会．新型コロナウイ
ルス核酸増幅検査の精度管理ガイダンス 2021．日本臨床検査標準協議会．p40．
（東田）Q13）遺伝子関連検査室の空圧管理の考え方を知りたいです。
A13）新型コロナウイルスの臨床検査は、BSL2+、すなわち、クラスⅡの生物学的安全キャ
ビネットを有する BSL2 の部屋で、作業者が個人防御具をつけて行うとされています 1)。そのため、部屋の陰圧管理は不要です。ただし、検査中は窓や扉を閉め、許可された人だけが入室できる状態になっている必要があります。新型コロナウイルスの分離や培養の実験を行う場合には、BSL3、すなわち、室内全体が陰圧で、出入り口が前室を挟む二重扉となっており、排気がフィルター濾過などで処理される部屋で行う必要があります。
参考資料
1) 国立感染症研究所．病原体検出マニュアル 2019-nCoV Ver.2.9.1. 2020．
（東田）各論（実際の検査の現場での注意点）
分析前プロセス：検体の前処理工程について
中谷、仁井見、八木、谷本、松永-----------------------------------------------------------------------------------30

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最重要 A

Q14）検体保存液として不活化機能を持たない溶液（輸送液）を使用している場合には、検体の取り扱いにどのような注意が必要ですか。
A14）以下を厳守してください 1)。
・使用した容器は紫外線滅菌を行う。
・取り扱いには手袋を必ず着用し、検体を扱った手で他の場所を触らない。
・触った場合は 80%エタノール等で拭き上げを実施する。
・検体容器を開封するときは安全キャビネット内で実施する。
参考資料
1) 国立感染症研究所『2019－nCoV（新型コロナウイルス）感染を疑う患者の検体採取・輸送マニュアル ～2021/03/19 更新版～』 2021 年 3 月

Q15）検体保存液として不活化機能を持つ溶液（輸送液）を使用している場合には、検体を感染物として取り扱う必要はないと考えても良いですか。
A15）不活化機能を持つ溶液を用いても、基本的に感染物として取り扱う必要があります。
容器外面に不活化されていない検体が付着している可能性も考慮すべきです。

Q16) PCR 試薬の取り扱いにおいて、非特異増幅を予防する方法はありますか。
A16) 先ず一般的な PCR 試薬の注意事項として試薬の冷蔵等がありますが、各社の試薬で注意事項は異なりますので、反応条件や取り扱い等、試薬の注意書きに従うことが必要です。
また、検査場所（ゾーニング）の徹底（PCR 試薬精製部屋の近くが望ましい）や、PCR 後の増幅産物はオートクレーブ滅菌をしないこと等が極めて重要です。

Q17）PPE 着用はどの程度まで、どの作業まで必要ですか。
A17）検体採取から、（検体保存液が不活化機能を持つ・持たないにかかわらず＊）PCR 前処理における不活化工程まで必要です。＊Q15 参照

Q18）安全キャビネットとクリーンベンチの使用前準備（消毒方法）、使用中の注意（ゾーン分けや手袋を変えるタイミングなど）、使用後の注意（清掃方法）について教えてく
ださい。
A18）以下、それぞれ安全キャビネット/クリーンベンチを分けて説明します。

使用前後の消毒・清掃方法について
 安全キャビネット（患者検体の取り扱い専用）
使用前：70％エタノールまたは 0.5～1.0％次亜塩素酸ナトリウム※1 等で清拭します。
使用後：稼働したまま、機器、作業台、器具などを 70％エタノールまたは 0.5～1.0％31日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編

次亜塩素酸ナトリウム※1 等で清拭し、その後、紫外線を照射します。
 クリーンベンチ（PCR 試薬の分注専用）
使用前後：0.5-1.0％次亜塩素酸ナトリウム※1 等で清拭した後、DNase/RNase フリー※2の超純水で十分に水拭きを行います。

※1：次亜塩素酸ナトリウム水溶液が残存していると、後の検査に影響を与え、金属を腐食するため、十分な水拭きが必要です。
※2：DNase/RNase はそれぞれ DNA・RNA を分解する酵素のことを指します。核酸を取り扱う検査や実験において、DNA・RNA 分解酵素が入っていない（＝DNase/RNase
フリーの）超純水を用いる必要があります。

使用の際の注意について 安全キャビネット（患者検体の取り扱い専用）· 感染性を有する患者検体の前処理および抽出作業に用います。
· キャビネット内部は常に清浄に保持し、不必要な器具は持ち込まないようにしましょう。
· 予備実験（コールド作業）を実施し、検体分注等キャビネット内で行うすべての作業が完結できるように、予め準備を行いましょう。
· 作業台に作業用ろ紙を敷いて、サンプル等がこぼれた時でも作業台の汚染を最小限にする。サンプル等がこぼれた時は作業用ろ紙を廃棄し、作業台を 0.5-1.0％次亜塩素
酸ナトリウム水溶液で拭き取り、手袋を交換して新たな作業用ろ紙を敷きましょう。
· 作業台上の備品の配置は手の動線を考え、「チップ装着」→「検体容器からのサンプリング」→「PCR チューブへの分注」→「チップ廃棄」が一方通行となるように考慮しましょう。
· 作業者の他に、作業者の消毒などを補佐する人がいることが望ましいです。
· 安全キャビネットから手を出す場合、グローブは交換するようにしましょう。
· キャビネット内で使用したものはすべて感染性の廃棄物として処理しましょう。
 クリーンベンチ（PCR 試薬の分注専用）· クリーンベンチや、その中で扱うピペット、チップなどの器具・消耗品はすべて PCR
試薬精製専用にしましょう。
· 室内に不必要なものは持ち込まず、常にすっきりとした状態にしましょう。
· 必ず、新しい手袋で作業をしましょう。別の作業（特に検体の取り扱いなど）で使用した手袋を使用しないようにしましょう。

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Q19）作業中に、着衣や手袋を交換する必要はありますか。
（安全キャビネット外の作業では殆ど手袋を変えない人が多い）
A19）安全キャビネットから手を出した場合は手袋を変える必要があります。患者検体を扱った手袋は汚染源となるため、安全キャビネット外の装置や試薬を触ってはいけません。
重要 B

Q20）検体保存液に入れていれば、室温で保存・輸送した検体であっても PCR 検査に利用可能ですか。
A20）検体保存液や不活化液は、それぞれ検体中の核酸（RNA）の保存安定性を保つための条件が異なります。よって、各施設で利用している検体保存液の種類と核酸の安定性条件を把握した上で、適切に輸送条件や保存期間、温度などを管理し、検体を取り扱うことが必要となります。
例：A 社の検体採取液は、検体の安定性として「冷蔵で 24 時間、-20℃で 3 日間を保障」など。

Q21）検体（スワブ、輸送培地懸濁液、PBS 懸濁液、生理食塩水懸濁液）の保管条件と保管方法について教えて下さい。
A21）スワブは乾燥することを避け、密封できる容器に保管してください。検体採取後は検体保存液の種類（輸送培地懸濁液、PBS 懸濁液、生理食塩水懸濁液）に関わりなく、可能な限り速やかに氷上または冷蔵庫（4℃）に保管し、輸送開始までに 48 時間以上かかる場合
は-80℃以下で凍結保存してください。-80℃の冷凍庫がない場合は通常の冷凍庫（-20℃程度）でかまいません。受入検査機関において速やかな検査が困難な場合も医療施設内での検体の保存（-80℃、不可能であれば-20℃）をしてください。
参考資料
・国立感染症研究所『2019－nCoV（新型コロナウイルス）感染を疑う患者の検体採取・輸送マニュアル ～2021/03/19 更新版～』 2021 年 3 月

Q22）陽性コントロールを分注するピペットは、検体と同じピペットを用いて良いですか。
A22）試薬・検体・陽性コントロールそれぞれ専用のものを用意することが望ましいです。
最低でも試薬を分注するピペットと検体・陽性コントロールを分注するピペットは分ける必要があります。また、キットによっては高濃度のコントロールを希釈する工程が存在する場
合があるので、その場合には検体とコントロールでもピペットを分けることが望ましいです。

Q23）陽性コントロールは、検体と同じ安全キャビネット内で取り扱って良いですか。
A23）同じ安全キャビネット内で取り扱っても差し支えありませんが、エアロゾルによるク
33

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ロスコンタミネーションを避けるため、陽性コントロールの取り扱いには十分に注意が必要です。以下、注意点を列記します。
· 可能な限り不活化されている陽性コントロールを使用しましょう。
· 陽性コントロールは最後に分注します。
· 陽性コントロールのスピンダウン後は 30 秒～1 分ほど静置し、エアロゾルを落ち着かせてから蓋を開けましょう。
· 蓋が開いているままでチューブを取り扱う場合、ピペット操作をゆっくり行いましょう。
· ピペット操作時、蓋が開いているチューブの上をピペットの先端が通過しないようにしましょう。
· 高濃度のコントロールを扱う場合には、安全キャビネットを分けることが望ましいです。

Q24）出血を伴った検体は、どのように取り扱えば良いですか。
A24）各社の試薬によって影響が異なるため一般的なことは言えません。検査キットによっては影響を受ける可能性があるため、先ずは核酸精製を実施せずにキット添付文書、あるいはメーカーに直接確認してください。
例：A 社試薬の場合、ヘモグロビン濃度 1000mg/dL 程度は影響がない、等。
その他 C

Q25）検体分注用ピペットは、複数の検体を分注する度にアルコール綿で拭きとり作業をする必要がありますか。
A25）検体保存容器から直接ピペットを用いて検体を吸引する場合には、ピペット本体が容器の内部に接触し汚染される危険があるため、毎度清拭を実施する必要があります。
ピペットを清拭する場合、アルコールではウイルスの RNA を破壊することはできず、コンタミネーションが発生する可能性があるため、次亜塩素酸ナトリウム水溶液で拭きとってください。なお、次亜塩素酸ナトリウム水溶液が残っていると後の検査に影響を与えるので、しっかりと水拭きすることも留意ください。ただし、検体保存容器から使い捨ての滅菌スポ
イトで別の 1.5 mL チューブ等に検体を少量移し、そこからピペットを用いて分注するなどの工夫をすると、ピペット本体が汚染される可能性が減るため、このような場合には検体を分注する度の清拭が不要です。また、チップは検査用のフィルター付きチップを使用し、エアロゾルを発生させないように、ピペット操作を慎重に行うことも大切です。勿論、少しでも汚染された可能性がある場合には清拭して除染する必要があります。

Q26）試料の前処理に使用する容器は、滅菌したものを使用する必要はありますか。また、RNase free は必須ですか。
A26）市販の検査キット内の検査試薬やディスポーザブルプラスティック容器類は、通常
RNase free と考えられますが、検査室で用意するマイクロ遠心チューブやピペット用チップなどは滅菌し、RNase free である必要があります。乾熱滅菌や火炎滅菌では RNase を確34

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実に除去することができますが、オートクレーブだけではわずかに残る可能性があることに留意が必要です。

Q27）不活化剤入り輸送培地は使用可能ですか。
A27）検査キットごとに検査系が異なり、推奨する試薬が異なるため、使用する検査キットの添付文書、検査薬メーカーに確認してください。

Q28）粘性のある検体と試薬を混合する際に注意すべき点を教えてください。
A28）粘性のある検体の分取では、定量が不正確となる可能性があり、先切りピペットチップを使用し、適正量を分取できているか、ゆっくり吸引して既定の液量を分取できるように目視確認することで、検体量が過不足ないよう気をつけましょう。混和させる必要がある場
合は、チューブを開栓時の飛び散りを防ぐため、スクリューキャップ、オーバーキャップであるものが望ましいです。攪拌後は遠心をして混合液を容器下部に集めることが必要です。

Q29）チューブ等を氷冷する際に注意すべきことはありますか。
A29）チューブ等に、氷や結露水が混入しないように注意しましょう。また、氷と直接接することなく、急速に冷却するために、クーリングブロックなどの使用を考慮してください。

Q30）DNA と RNA の取り扱いでそれぞれ注意しなければならない点は何ですか。
A30）RNA は DNA と比較して不安定ですが、RNA が不安定とされる主な原因は RNase のコンタミネーションです。このため、RNase がコンタミネーションしないよう、コンタミネーションしても作用しないように、以下のことに注意してください。
· RNA 用の器具、試料には素手で触れないように手袋を常に着用しましょう。
· RNA は不安定であるため、取扱いは低温で迅速に行い、高純度化、高濃度化においてはアルコール沈殿による濃縮やまた RNase のコンタミネーションを留意し、酵素の活性を阻害するタンパク変性剤入りの溶液から RNA を精製する方法が望ましいです。

Q31）核酸抽出と精製の違いは何ですか。
A31）「抽出」はウイルス内部にある核酸を外部に出すことであり、「精製」は夾雑物から核酸を単離することです。

Q32）ピペットの使用法で注意すべきことを教えてください。
A32）チップはフィルター付きを用いてください。ふきだし（押しだし、ブローアウト）は飛び散り（エアロゾル発生）の可能性があるので リバース法を用い、あらかじめ規定量よりも多めに吸引し、排出時に規定量を排出するようにしましょう。

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Q33）ボルテックス・スピンダウンをする際の留意するべき点を教えてください。また、凍結乾燥品のチューブを開ける前にも、遠心が必要な理由は何ですか。
A33）先ずボルテックスでは泡の影響を受ける酵素等もあるので、泡が出るほどまで極度にボルテックスをし過ぎないように注意しましょう。チューブについては、ボルテックスの必要がある場合はスクリューキャップであるものが良いでしょう。キャップ一体型は開封時、飛び散りの可能性があります。また、飛び散り防止のため、攪拌後はスピンダウンをして液をチューブ下部に集めることが必須です。凍結乾燥品のチューブを開ける時には、粉体が飛散して汚染源となるため、やはりスピンダウンが必要となります。

Q34）フィルター付きチップを使う理由は何ですか。また、疎水性でなければいけま
せんか。
A34）クロスコンタミネーション防止のためです。フィルター付きチップを使わない場
合、エアロゾルがピペット内部に入り、他の試薬等にクロスコンタミネーションする可能性があります。特に疎水性のフィルターはエアロゾルや液体によるクロスコンタミネーシ
ョンの防止に優れていますので、使用が望ましいと言えます。

Q35）検体として不適切なものはどのようなものですか。
A35）検体量が極端に少なく、検体採取・輸送が適正に行われていない可能性があるもの
は注意が必要です。特に、メーカー指定外の容器や、グアニジン塩を主成分とする不活化剤入り輸送培地など、核酸を精製する必要がないダイレクト法では使用できないことがあるので、キットの添付文書、メーカーに確認を取るようにしてください。
各論（実際の検査の現場での注意点）
分析プロセス：（リアルタイム）PCR の実施について
下澤、大場、西田、小林、池尻誠技師（三重大学）-----------------------------------------------------------------------------------最重要 A＜精度管理に関して＞

Q36）RT（逆転写）の精度管理はどうしますか。
A36）新型コロナウイルスポジティブコントロール RNA が様々なメーカーで販売されています。ただし、検査試薬によっては検出できない配列の場合があるので注意が必要です。毎回の測定時に検体と同じように用い、統計学的な許容範囲を設定して精度管理を実施するのが良いと思われます。検体種によって異なりますが、鼻咽頭や鼻腔ぬぐいの場合は、採取が不十分でない限りほぼ 100％ヒト遺伝子が入ります。問題は唾液です。唾液は一般的に粘性があるので希釈（3～5 倍程度）
・遠心することが必要です。さらに粘性が高い場合はもう一
段階希釈をします。その場合、わずかではありますが IC が立ち上がらないケースもあります。タカラ試薬では PCR 反応液にメーカー別売のヒト遺伝子（ヒト RNase P 遺伝子）を添
36

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加しています。ロシュ試薬（コバスシリーズ、LIAT）の場合は現法のままです（試薬の詳細については非開示）。PCR のサイクル数は感染研法（研究検査依頼時で実施）、タカラ試薬は45 回です。
（飯田）。
「IC（内部コントロール）として DNA を用いる試薬、RNA（β-actin、B2M の RNA など）を用いる試薬では評価できる範囲（逆転写反応を含むかどうか）が異なる」ことに注意が必要です。IC として、検体中の RNA の品質を確認するために、症例を問わず安定した発現量を保有し、SARS-CoV-2 と同時に PCR 反応を行った際に規定範囲の Ct 値で立ち上がる遺伝子を IC として選定する必要があります。RNA および DNA IC の共通の役割としては、規定内の Ct 値で立ち上がった場合に、PCR の反応系に問題がないことを確認することです。内在性 RNA を利用する利点としては、検体採取量の不足や検体の取り扱いによる検体中の RNA の分解度を把握できることが挙げられます。検体採取量や夾雑物質、検体の保管方法などに問題がなかった場合につきましては、IC の Ct 値はある一定の範囲内で立ち上がりが見られることから、この値を検体の品質や採取量の指標として利用可能と判断しています（吉本）。RT-PCR では、本手順書とは異なる方法（原理）を用いた診断キットも保険収載されています。例えばミュータスワコーg1 の RT-PCR-CE 法では次の点が異なります。
· プローブは用いず、蛍光プライマーを用いている点· 検出は、生成物の一部を電気泳動で解析することにより行っている点（谷本）
以上のように各検査法の特徴や詳細をよく理解して臨床検査に従事することが必要です。
重要 B＜IC に関して＞

Q37）IC に添加された DNA を用いている検査試薬もありますが、検査上どのように考えれば良いですか。
A37）PCR による増幅工程が正しく起こっている指標です。PCR 反応の内部精度管理に使えますが、RT（逆転写反応）の精度管理はできません。

Q38）内部コントロールがない試薬の場合、増幅阻害を判断する方法はありますか。
A38）内部コントロールがない市販の専用キットでは判断することができません。
理由）内部コントロールが増幅していることで、PCR 反応が成功している（増幅阻害が起きていない）と判断しているためです。
対応）そのような場合、キットを用いずにコロナウイルスを検出するチューブとは別のチ
ューブを用意し、内部コントロールを増幅させます。つまり 1 検体につきコロナウイルス
用、内部コントロール用の反応チューブにてそれぞれ逆転写反応・PCR 反応を行います。そして内部コントロールが増幅、コロナウイルスが増幅しなかった場合、陰性と判断します。
両方とも増幅すれば陽性と判断します。内部コントロールが増幅しなければ再検査をします。

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新型コロナウイルス感染症検査委員会編＜最小検出感度、検査の感度・特異度に関して＞

Q39）検体から抽出キットを用いて抽出した RNA を用いる検査と、RNA 抽出を行わず検体をダイレクトに RT-PCR にかける検査とで検出率を比べた場合、どのような差が出ますか。
A39）核酸抽出することによって、検体中の夾雑物の除去、RNA の濃縮を行えるので検出率は高くなると考えられますが、厚生労働省の EQA の結果からは差がないと考えられます。

Q40）変異株が PCR 検査の感度や特異度に与える影響はどのようなものがありますか。
A40）設計しているプライマー配列部位に変異が起こらない限り影響はないと思われます。
＜原理に関して＞

Q41）LAMP 法とはどのような方法ですか。また、唾液検体だと LAMP 法で偽陽性が出やすいというのは本当ですか。なぜ偽陽性になるのですか。
A41）LAMP 法の原理については、EikenGenomeSite(http://loopamp.eiken.co.jp/lamp/index.html）をご参照ください。唾液を検体として使用した際に非特異反応が生じることがあります。非特異反応は室温での操作が想定より長いなどの理由により十分に試薬の温度が下がっていない場合において、プライマー同士が非特異的に結合しプライマーダイマーを形成することに生じるものと推測しております。特定までには至っておりませんが、検体中の夾雑物により非特異反応が助長されるケースも認められておりますが、現在、先に示しました氷冷操作や栄研化学の試薬改良により低減化しております。
（副島）Q42）マルチプレックス PCR と一項目の PCR で感度に違いはありますか。
A42）マルチプレックス PCR は複数のプライマーセットが単一チューブ内に存在するた
め、感度が低下する場合がありますが、体外診断用医薬品として販売されている検査試薬
は感度が低下しないように精製されています。
＜最小検出感度、検査の感度・特異度に関して＞

Q43）通常の PCR と専用機での PCR だと検体接種量が異なりますが、感度に違いはありますか。
A43）各検査キットにより、PCR 反応に持ち込む検体量（ウイルスのコピー数）が異なるた
め感度も異なります。
理由）例として A 社では 5μL の検体量を、B 社では 200μL の検体量を用いて PCR 反応を行った場合、この時点で 40 倍の差が生じています。
同じ検体を、異なる試薬やサーマルサイクラーで検査すれば、大体は検出感度が異なります。また通常の PCR が定性的（エンドポイント PCR）である場合、用いる機器、試薬、プ
ライマー、検体量、熱反応ステップ等の最適条件を求め、その系で検査をします。
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その他 C＜原理に関して＞

Q44）PCR 検査で機種によって速さが違うのは何故ですか。
A44）RNA をゲノムに持つコロナウイルスを検出するためには、①逆転写反応（RNA→DNA）と②PCR 反応が必要です。キットによって①と②の反応時間が異なっているため、最終的な結果までの所要時間に差が生じます。反応溶液調製や RNA 抽出などを手作業で行うか、機器が全自動で行うかによっても所要時間が異なります。

Q45）ロシュ製品にはプロセスコントロール（RNA）が含まれていますが、これはどのような意味がありますか。
A45）プロセスコントロールとは抽出から PCR 結果までのすべての工程をモニタすることができる外因性の陽性コントロールです。検体が RNA である場合は DNA である場合に比べて分解や阻害の要因が多くなります。そこで、プロセスコントロールも DNA でなく検体に合わせて RNA を採用しています。
（西田）Q46）LAMP 法で反応が 30 分を超えたあたりで、陰性であるのにもかかわらずわずかに増幅することがありますが、その原理はどのようなものですか。
Ａ46）LAMP 法で 30 分を超えたあたりで陰性なのにわずかに増幅するケースにつきましては、非特異反応が考えられます。非特異反応は、室温での操作が想定より長いなどの理由により十分に試薬の温度が下がっていない場合において、プライマー同士が非特異的に結合しプライマーダイマーを形成することに生じるものと推測しております。また、特定までには至っておりませんが、検体中の夾雑物により非特異反応が助長されるケースも認められておりますが、現在、先に示しました氷冷操作や弊社での試薬改良により低減化しております。
ただし、弊社での確認の結果、このようなケースは必ずしもすべてが非特異反応ではなく、特異的反応であることもございます。なお、両者を増幅曲線にて区別することは困難です。
教科書レベル＜分析中の操作に関して＞

Q47）試薬、検体等の量が極めて微量のため操作が難しいと感じています。また、PCR
チューブの開閉等、細かい操作に慣れていないため苦労します。扱い方やコツなどはありますか。
A47）ピペット操作を練習して慣れていただきたいです。
キャップの開閉は、チューブキャップオープナーを使用してはいかがでしょうか。
また、使用量が微量（0.5μL レベル）の操作に慣れていないならば、例えば 10 本分の反応溶液を調製して、微量操作を避け、1 本 1 本に分注することをお勧めします。
＜原理に関して＞
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新型コロナウイルス感染症検査委員会編

Q48）（リアルタイム）PCR の原理がわかりません。
A48）臨床検査でよく用いられているリアルタイム PCR 法（TaqMan 法）について
Polymerase Chain Reaction（PCR）は、①熱変性、②アニーリング、③伸長反応によって目的の DNA 領域を増幅させる方法です。この PCR によって増幅する DNA 量をリアルタイ
ムに測定する方法が、リアルタイム PCR 法です。
参考資料
・北篠浩彦．原理からよくわかるリアルタイム PCR 実験ガイド. 羊土社．2008．P20

Q49）PCR は DNA を増やす技術と聞いています。新型コロナウイルスは RNA ウイル
スのはずですが、何故 PCR で測定ができるのですか。
A49）RNA をゲノムに持つインフルエンザウイルスや HIV もそうですが、そのままではPCR では反応しません。PCR というのは、DNA は増やせますが、RNA を増やすことはできないからです。RNA を検出したい場合は、RNA を逆転写反応により一旦 DNA に変え、PCRを行うことで間接的に RNA の存在が判定できます。また核酸の安定性からいっても、DNAの方が扱いやすいです（RNA は不安定で、壊れやすい）。
これより、まずコロナウイルスの RNA を逆転写反応により相補的な cDNA を合成します（DNA ができたので PCR を行えます）。このコロナウイルス由来の cDNA をテンプレートに、PCR 反応を行えば、ウイルスがいると cDNA が合成されるので、PCR 反応で増幅されます（陽性）。ウイルスがいないと、cDNA が合成されないので、PCR 反応で増幅されません（陰性）。RNA を検出する場合は、一旦 DNA にしなければ検出できないのがポイントになります。
分析後プロセス：group4：松下、吉本、曽家、丸瀬、石毛、大場-----------------------------------------------------------------------------------最重要 A

Q50）PCR 検査の増幅曲線の縦軸と横軸の意味は何ですか。
A50）縦軸：蛍光強度（PCR 増幅産物の量を反映する）、横軸：PCR サイクル数を表します。
（参考資料１）

Q51）Ct 値とは何ですか。
A51）Ct（Threshold Cycle）とは、PCR 増幅産物がある一定量に達したときの PCR サイ
クル数のことです。Ct 値とは Threshold Line と交わったサイクル数を言います。このThreshold Line と交わったサイクル数は、閾値サイクル（threshold cycle：Ct）、クロッシ
ングポイント（crossing point：Cp）、テイクオフポイント（take-off point：TOP）などが用いられています。リアルタイム PCR のサイクル数を表す表現は解析方法やメーカーにより異なりますが、定量に用いられるという意味では同じ役割をしていると言われます。一般40

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新型コロナウイルス感染症検査委員会編的な表現としては、quantification cycle:Cq と表現されることがあります。
参考資料
・MIQE: The Minimum Information for Publication of Quantitative Real-Time PCR
Experiments．Clin Chem 2009；55:611-622.
Ct 値の算出方法には、閾値と増幅曲線の交点を Ct 値とする方法（Crossing Point 法）の他に、増幅曲線の 2 次導関数を求めてそれが最大となる点を Ct 値とする方法があります（2nd Derivative Maximum 法）。前者では、閾値を指数関数的増幅域の任意の位置に（自動もしくは手動で）設定して解析しますが、その位置により Ct 値が変化するので実験間の誤差が大きくなりやすい傾向があります。一方、後者は、最も増幅速度の変化率が大きい時
点を Ct 値とするので、閾値により Ct 値が変化することがなく再現性が高く、また、装置の検出誤差による影響も排除できるため高精度と考えられています。（吉本）
リアルタイム PCR 法の場合は核酸増幅に必要なサイクル数（Ct 値）より定量的に表現できますが、陽性判定のカットオフ値をあらかじめ予備検討を行い試薬と装置に応じて設定しておく必要があります。カットオフ値を超えて核酸増幅曲線が立ち上がってきた場合や陽性
コントロールと傾きが異なる核酸増幅曲線が得られた場合は、判定保留として再検等の精査を行います。精査の方法としては、リアルタイム PCR 法による再測定に加え、前回値チェ
ックを含む診療録の確認、抗原検査など他法での確認、増幅産物の塩基配列の確認等が挙げられますが、それぞれ状況に応じて対応します。リアルタイム PCR 法では Ct 値より検体中に存在するウイルス核酸量（コピー数）を推定することができます。低い Ct 値ではコピー数が多く、逆に高い Ct 値ではコピー数が少ないと判断します。さらに高 Ct 値の場合には、
例えば核酸増幅が確認されても、その検体から感染性を示すウイルスが分離されにくくなることに注意が必要です（「新型コロナウイルス核酸増幅検査の精度管理ガイダンス」ＪCCLS版。2021 年 6 月。62 ページ）。
（松下）ただし、採取された検体の Ct 値は種々の要因（検体採取など）により影響を受けるので、その多寡をもって病勢や感染性などを判断することは困難です。
（石毛）
参考資料 1
・<https://www.takara-bio.co.jp/research/prt/pdfs/prt1-3.pdf>
その他、Ct 値の解釈に対しては下記の検討が参考になります。
・COVID-19 有識者会議「感染拡大防止の鍵となる社会的 PCR スクリーニング」，<https://www.covid19-jma-medical-expert-meeting.jp/topic /6489>

Q52）Ct 値に国際的な基準はありますか。
A52）PCR 検査法の手法（特に検査への検体の持ち込み量、核酸抽出精製の有無、反応系へ
41日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編の核酸の持ち込み量）が方法によって異なるため、最小検出感度や同一検体を測定した際のCt 値は検査方法ごとに異なります。よって、Ct 値のカットオフも PCR 検査一律に決められるものではありません。同じ Ct 値のカットオフを採用したと仮定すると、同程度の最小検
出感度を得ようとすれば、必然と Ct 値のカットオフは変わるものです。したがって、統一した基準が作れるものではないと考えられます。
（大場）Q53）同じ Ct 値を採用している検査は同じ感度を有していると言えますか。また、同じ RNA 溶液であれば、使用する PCR 試薬や機器が異なっても、Ct 値は同じになりますか。
A53）PCR 検査の手法（特に検査への検体の持ち込み量、核酸抽出精製の有無、反応系への核酸の持ち込み量）が各種キットや試薬、方法によって異なるため、カットオフに同一の Ct
値を採用している検査系であっても、最小検出感度は同一とは限りません。さらに、PCR 検査における各工程の効率（抽出効率、逆転写効率、増幅効率）は各種キットや試薬、手法、操作によって異なり、PCR 装置によって Ct 値算出アルゴリズムも異なるため、同じ検体を用いた場合であっても、Ct 値は異なる可能性が高いと考えられます。（吉本）

Q54）検体種や検体前処理等が違うのに、Ct 値で比較評価して良いのですか。Ct 値 40
は判定基準となるのですか。
A54）各種検査手法における検体種間の一致率評価については下記資料を参照してください。
①厚生労働省科学研究班（北大：豊嶋班）の「無症状者の唾液を用いた PCR 検査等について」②唾液を用いた PCR 検査に係る厚生労働科学研究の結果について：「新型コロナウイルス感染症の診断における鼻かみ鼻汁及び唾液の有用性の検討」
検査手法が異なる方法間では、A53 の理由から、Ct 値のみで製品の性能を評価することはできません。
理論上、検査系に対象遺伝子が 1 コピー含まれていた場合、40 サイクル以内で閾値を超え検出されることになりますが、実際には、各検査方法における最小検出感度は 1 コピー
以上であり、統計学的にも 1 コピーまでの検出は難しいと考えられています。（吉本）

Q55）PCR 検査の結果の判定について、例えば Ct 値 40 を超えて立ち上がりが見られた時に、再検、結果の解釈、臨床への報告の仕方についてのルールはありますか。
A55）各社試薬の添付文書に従い、判定および再検を実施します。また、各施設において、使用する試薬の Ct 値について何コピーまでを許容するか、再検査するかについても検証し、陽性判断の基準を設定することも必要です。システムによってはソフトウェアが陽性判断まで行うものがありますが、それを利用する場合には陽性判断のアルゴリズムを理解しておく必要があります。
42

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参考資料
・「新型コロナウイルス核酸増幅検査の精度管理ガイダンス」ＪCCLS 版。2021 年６月。67ページ。（松下）

Q56）N1 だけまたは N2 だけ立ち上がった時の解釈はどうしたら良いですか。
A56）各社試薬の添付文書、および各施設での陽性判断の基準に従い、判定および再検査を実施します。各施設での陽性判断の基準の一例として、PCR の２領域のうち一方のみ立ち上
がった場合には、再検査を 2 重測定で実施し、最初の検査と合わせて合計 3 回の結果について、2 領域の一方のみの立ち上がりでも陽性とみなして数え、合計 3 回のうちで陰性または陽性で多い方の結果を、最終の結果として採用している施設もあります。なお、PCR の２領域のうち一方のみの立ち上がりにもかかわらず、Ct 値が小さい場合には、増幅産物のコン
タミネーションによる偽陽性の可能性を検証する必要があります。検証した結果、増幅産物のコンタミネーションではない場合には、立ち上がりが見られない方のプライマーまたはプ
ローブ認識配列への変異の可能性が考えられます。（吉本）（丸瀬）

Q57）前日の検査で Ct 値 20 前後、当日検査で PCR が陰性になった時の対応はどうしたら良いですか。
A57）試料と同時に測定された陰性コントロール、陽性コントロールの測定結果を参照し、
偽陽性、偽陰性の可能性の検証後、再検査実施されることを推奨します。(曽家)検体がうまく採取されていない場合などが考えられるため、PCR だけでなく検体採取も含めた再検査を推奨します。
（石毛）Q58）抗原定量検査で陽性と出た検体に、念のため PCR 検査をすると陰性と出ました。
どのように扱ったら良いですか。また、その出現頻度はどのくらいですか。
A58）定量抗原検査キットのルミパルス SARS-CoV-2 Ag（製造販売承認番号：
30200EZX00035000）の審査概要 1)や添付文書 1)に、以下の例が紹介されています。RTPCR 法との比較において「判定不一致となった RT-PCR 法陰性検体 8 例は全て RT-PCR
法陽性歴のある 検体 2 であり、発症から 9 日～23 日目の回復期の症例で、カットオフ値の近傍 3 において認められました。
脚注 2：入院時には PCR 陽性だったが、本研究時には陰転化が検討された症例由来の検体
脚注 3：「1-10pg/mL が 4 例、10-50pg/mL が 2 例、50-100pg/mL が 2 例」とあります
ように、タンパクを見る抗原検査でしっかり出るものが、特に発症から日数がたった回復期の 検 体 で は RNA を み る PCR 検 査 で は 出 な い も の も あ る よ う で す 。 こ の 事 例 で は8/325=2.4%との出現頻度となります。
（大場）
また、抗原検査と PCR 検査ではサンプリングに用いる綿棒が異なるため、完全な同一検体として考えることはできません。一方で、サンプリングに問題がなかった場合については、
抗原検査、PCR 検査それぞれの偽陽性、偽陰性の可能性を鑑みた上で、総合的にどちらの結43

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果が正しいのかを判断する必要があります。
参考資料1）<https://www.mhlw.go.jp/content/11124500/000642329.pdf>（2021.11.15 最終確認）

Q59）PCR の Raw データを確認すると波形の乱れがある検体があります。どのような対策がありますか。
A59）装置の設定、操作での反応液の泡立ち、検体特有の成分の影響などケースバイケース
で、ケースに応じて検証し対策する必要があります。（大場）

Q60）偽陽性となりうる要因にはどのようなものがありますか。
A60）以下の二つの可能性が考えられます。
①非特異増幅による偽陽性は、試薬の取り扱い不良（冷却下での保存を行っていないなど）
によるプライマーダイマーの産生が要因と考えられます。
②コンタミネーションによる偽陽性は、陽性検体や陽性コントロール、そして増幅産物の検査系へのコンタミネーションが要因と考えられます。（吉本）
増幅産物がコンタミネーションの主要な原因となるので、PCR 後の反応液は蓋を開けずに廃棄します。(石毛)Q61) 偽陰性となりうる要因にはどのようなものがありますか。
A61) 以下の①～④の可能性が考えられます。
①RNA の分解：検体の取り扱いの不良（保存条件：温度や時間や、体液等からの RNase の混入）に起因します。
②試薬の反応性の低下：試薬の不適切な取り扱い（高温下での保存、蛍光試薬を遮光せず保管、メーカー上限を超えた凍結融解回数など）に起因します。
③操作不良：試薬分注量の過不足など、試薬および装置の操作方法が不適切であったことに起因します。
④装置の動作不良：レザーや受光部の不良、温度制御エラーが出現する場合には、偽陰性となる可能性があります。定期メンテナンスや精度管理を行い、装置が正常に動いていることを確認することが重要です。
（吉本）。
総論 Q1、Q2 を参照してください。分析感度、診断感度の記載を参考に整理して考えてください。（松下）

Q62）他の検体の結果に比べて蛍光が全体的に低いのですが、問題ないですか。あるいは逆に他の検体の結果に比べて蛍光が全体的に高いのですが、問題はないですか。
A62）蛍光強度が低くても、判定に影響しない程度であれば問題はありませんが、蛍光強度
44日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編が極端に低く判定が難しい場合は、再検査を推奨します。蛍光強度低下の要因としては、検体などに起因する PCR 反応阻害（非特異増幅含む）や PCR 装置のトラブルの可能性が考えられます。なお、検体を直接 PCR 試薬で増幅する検査においては、PCR 装置のトラブルが考えにくい場合には、PCR 反応阻害物質の濃度を下げることを目的として、検体を希釈しての再検査を推奨します。一方で蛍光強度が高い場合については、増幅曲線の形状に異常がなければ、問題はないと考えられます。ただし、シグモイド型の増幅曲線でない場合には、非特異増幅の可能性が考えられます（吉本）。
重要 B＜検体の特性に関する内容＞

Q63）同じ患者から採取された、唾液と鼻咽頭ぬぐい液ではウイルス量はどちらが多いですか。
A63）唾液と鼻咽頭ぬぐい液との間には高い一致率が認められています。以下の論文をご紹介します。
①Lorenzo Azzi, et al. Saliva is a reliable tool to detect SARS-CoV-2．J Infect 2020；
81(1) E45-E50．
Published: April 14, DOI: https://doi.org/10.1016/j.jinf.2020.04.005②厚生労働省科学研究版（北大：豊嶋班）の「無症状者の唾液を用いた PCR 検査等について」：鼻咽頭と唾液の一致率（PCR）：90.1％
鼻咽頭と唾液の一致率（LAMP）：90.1％③ 唾液を用いた PCR 検査に係る厚生労働科学研究の結果について：「新型コロナウイルス
感染症の診断における鼻かみ鼻汁及び唾液の有用性の検討」。発症から 9 日以内の症例
では、鼻咽頭ぬぐい液と唾液との結果に高い一致率が認められた。

Q64）Ct 値＞40 の低コピーのウイルスでは、他人へ感染させる可能性は低いですか。
A64）日本感染症学会：COVID-19 検査法および結果の考え方（2020 年 10 月 12 日）で
COVID-19 発症後の日数とウイルス遺伝子数（Ct 値）の関連が示されており、報告結果では遺伝子検査陽性が必ずしも感染性ありとはならない可能性が示唆されています。（吉本）
参考資料
・<https://www.kansensho.or.jp/uploads/files/topics/2019ncov/covid19̲
kensakekka̲201012.pdf>

Q65）陽性になった患者が 1 か月経過後も、PCR 陽性となります。どの程度まで陽性と検出されますか。
A65）PCR 検査ごとに最小検出感度やカットオフ基準値が添付文書等で公開されておりま
45

日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編

すのでそちらを参考にしてください。
（吉本）
症状が軽快したのちも、数週間にわたって遺伝子検査が陽性を示すことが報告されています。一方で、ウイルスの分離は 発症後 8 日目までであり、その後のウイルスの分離はみられていません。遺伝子検査陽性が必ずしも感染性ありとはならない可能性が示唆されています。
参考資料
・COVID-19 検査法および結果の考え方（2020 年 10 月 12 日）、日本感染症学会，<https://www.kansensho.or.jp/modules/topics/index.php?content̲id=47>
有症状患者の臨床経過とウイルス検査の関係について、以下の図を参考にして下さい。

引用文献：「COVID-19 感染対策における PCR 検査実態調査と利用推進タスクフォース」
中間報告書解説版「PCR 検査の利用の手引き:保険適用の行政検査を中心に」 図 3（石毛）＜検査性能に関する内容＞

Q66）様々なキットを同時比較した成績はありますか。
A66）厚生労働省委託事業「新型コロナウイルス感染症の PCR 検査等にかかる精度管理調査業務」報告書. <https://www.mhlw.go.jp/content/000769978.pdf>の外部精度管理調査の結果（p.21）を参照してください。
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日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編＜検査結果の判定に関する内容＞

Q67）測定結果の判定と臨床的背景が一致しない場合は、どのように考えれば良いですか。
A67） [患者内のウイルス量 (Viral load)] ≠ [検体中のウイルス核酸量] ≒ [Ct 値]と考えられており、
検体中のウイルス核酸量は Ct 値で推定できるものと解釈できます 1) 。ただし、方法などが異なる施設間での Ct 値の比較は困難であり、精度管理が適切に行われた同一施設内での評価に限定されます。AACC２)では、患者内のウイルス量や感染性が検体中のウイ
ルス核酸量と相関することについては確立した根拠がなく、採取された検体の Ct 値は種々の要因により影響を受けるため、その多寡をもって患者ケアのガイドにすることは推奨できないと記載されています。これは検体中の核酸が感染性を有するウイルス由来なのか、核酸の断片なのかの判断が難しいことも一因です。
（吉本）これについて JAMA 論文 3)では、”Insome cases, viral RNA has been detected by RT-PCR even beyond week 6 following
the first positive test. A few cases have also been reported positive after 2
consecutive negative PCR tests performed 24 hours apart. It is unclear if this is atesting error, reinfection, or reactivation. In a study of 9 patients, attempts to isolate
the virus in culture were not successful beyond day 8 of illness onset, whichcorrelates with the decline of infectivity beyond the first week.” とあり、発症から 1週間もすると培養は成功しないが PCR 陽性は比較的長く続くことが報告されています。
したがって、『採取された検体の Ct 値は種々の要因（検体採取など）により影響を受ける
ため、その多寡をもって病勢や感染性などを判断することは困難である』ことを理解することが臨床検査としては重要です。実際に同一患者・同一タイミングで提出された検体で、抗原定量検査が陰性・PCR が陽性（Ct20 前後)になったケースがあります。抗原定量検査の残試料を PCR で検査すると Ct は 35 以上と極めて微量でした。逆に PCR 用の検体で抗原定量検査を行うと陽性になりましたので、検体採取の影響が大きいと考えられます（石毛）。
参考資料１）「新型コロナウイルス核酸増幅検査の精度管理ガイダンス」ＪCCLS 版．2021 年６月
２）AACC Recommendation for Reporting SARS-CoV-2 Cycle Threshold (CT) Values
Date: JUL.7.2021 // Source: AACC
３）Sethuraman N, et al. Interpreting Diagnostic Tests for SARS-CoV-2. JAMA. 2020.
■一般的な解釈· 臨床的背景；陰性、PCR 検査結果；陽性の場合：無症候感染者や偽陽性の可能性も含めて検討されることを推奨します（Q＆A：60 偽陽性の項を参照してください）。
（吉本）· 臨床的背景；陽性、PCR 検査結果；陰性の場合：
偽陰性の可能性も含めて検討されることを推奨します（Q＆A：61 偽陰性の項を参照し
47

日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編てください）。また、プライマー認識配列への変異があった場合、増幅されないこともあ
るため、変異検査の実施も有効と考えます。（吉本）＜検査手法間の比較＞

Q68）抗原陽性、PCR 陰性の場合、どのような原因が考えられますか。また、その対応
方法や出現頻度について教えて下さい。
A68）・考えられる原因①PCR 偽陰性：科学的な理由の他、技術的な理由（検体の採取、核酸抽出精製、PCR などの各工程での不具合）でも偽陰性が起こり得ます。またプライマー認識部位に変異が入っている場合なども偽陰性となります。偽陰性の項、Q61 を参照してください。
②抗原偽陽性：検体採取方法、検体処理（綿棒の種類、粘性等）、陽性コントロールや陽性検体のコンタミネーションの可能性、免疫血清検査における非特異反応などが要因として考えられます。
・対処方法：①偽陰性要因の対策を実施して再検②検体の遠心分離、吸収試験
・出現頻度：不明（参考資料：Q＆A：58 の項を参照してください）-----------------------------------------------------------------------------------その他 C＜検査結果の判定＞

Q69）cobas6800 では、操作画面に増幅曲線が表示されませんが、偽陽性に気がつくにはどうしたら良いですか。また、閾値の設定は PCR 装置の自動モードを利用しても良いですか。
A69）コバス 6800 では、複数の因子から総合的に PCR 増幅を判断し解析アルゴリズムを確定していますので、増幅曲線は提供されません。そのため、添付文書に沿った適切な検体前処理を実施の上、システムに架設していただくことが重要となります。測定結果に基づく臨床診断は、臨床症状やほかの検査結果などと併せて、担当医師に総合的に判断していただ
くことになります。また、閾値の設定については、測定項目によって独自の設定が測定機に登録されており、ユーザーが手動で設定するものではありません。
（西田）
PCR 装置、試薬によって閾値の設定方法が自動や固定、手動など相違があるため、試薬ごとにメーカーの指示に従って適切な方法で閾値設定をする必要があると考えます。
増幅曲線の形状などにより Ct 値が正しく算出されない場合があるため、結果の判定は、
Ct 値の確認だけでなく、増幅曲線を確認することが重要と考えます。（吉本）＜検査性能＞

Q70）使用する製品によって、持ち込み患者検体量が異なるにもかかわらず、PCR 反応48

日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編の部分の感度のみを比較することに意味はありますか。
A70）感度の評価については、各社添付文書に記載されている最小検出感度を参考にしていただけますが、各社で単位が異なることにご注意ください。
（吉本）＜Ct 値＞

Q71）Ct 値、Cp 値、Cq 値といろいろありますが、それぞれ何を示していて、何が異なるのですか。
A71）リアルタイム PCR において、増幅曲線と閾値（Threshold）が交差するサイクル数のことです。PCR 装置によって呼び名が変わることがあります。
Ct, threshold cycle; Cp, crossing point; Cq=quantification cycle の略です。
すべて同じ値を指しています（MIQE ガイドラインでは Cq を推奨しています）。(石毛)参考資料
・Bustin SA, et al. The MIQE guidelines: minimum information for publication ofquantitative real-time PCR experiments. Clin Chem. 2009；55:611-22.
＜その他＞

Q72）PCR 後の廃棄物を捨てる際に注意すべき点は何ですか。
A72）増幅産物によるコンタミネーション防止の観点から、PCR 反応後のチューブを開けたりオートクレーブ処理せず、ジッパーバック等に入れて確実に封をしてからメディカルペー
ルなどの密閉容器に入れて廃棄することを推奨いたします。
（吉本）

Q73）Ct 値と症状の有無や重症度に相関がありますか。
A73）患者病日と各病日の平均 Ct 値に高い相関を認め、患者上気道検体中のウイルス量は
発症後時間経過に伴い低下することが以下の論文で紹介されています
参考資料
・<https://www.niid.go.jp/niid/ja/typhi-m/iasr-reference/2523-relatedarticles/related-articles-485/9765-485r09.html>
一方で、『採取された検体の Ct 値は種々の要因（検体採取量など）により影響を受けるた
め、その多寡をもって病勢や感染性などを判断することは困難である』ことを理解することが臨床検査としては重要です。
（Q&A：67 の項を参照してください）（吉本）
デルタ株は他の変異株（9 ページ）に比較して、感染者のウイルス数が多く、Ct 値が低い
状態が長く続き入院期間が長くなるとの報告があります。重症化に対しては不変とされます（国立感染症研究所 HP より）が、一方で基礎疾患のない 40～50 代でも重症化する症例が報告されています。デルタ株の重症化リスクについては、今後の検討が必要です。
49日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編

デルタ株で知っておくべき八つのことは以下の通りです。
１．感染性が強い。
２．症状は同じ。
３．ワクチン接種していない人に感染しやすい（ワクチンが推奨される）。
４．ブレイクスルー感染が起こりうる（まれ）。
５．爆発的感染の原因となる。
６．ワクチン接種せずに感染した患者はワクチン接種を受けておけばよかったと思う。
７．専門家はワクチン接種にくわえてマスクを推奨している。
８．今後は他の変異株（バリアント）も起こりうる。
参考資料
・UCDavisHealth より引用。
<https://health.ucdavis.edu/coronavirus/COVID-19-information/delta-variant.html>（松下）【デルタ型についての結論】
デルタ型は従来型よりもウイルス量が多く感染力が強く（天然痘よりも強く水痘なみ）
症状も重い。しかし致死率はあまり変わっていない。
デルタ型は、これまでの SARS- CoV-2 とは違って、感染力が高く、その基礎再生産数（R0）は 5 から 9 の間より重症の可能性が高いです。 (因みに天然痘と水ぼうそうの R0
値は、それぞれ、5.0 と 8.0 程度) 。ワクチンはデルタの重症化には＞90％有効です。しかし、ワクチンはデルタ感染予防に対しては、65～85％の有効性です。このため、ワクチ
ン接種者へのブレイクスルー感染と非接種者への感染を起こします。マスク、ソーシャル
ディスタンスのような、薬剤によらない予防策 (Non-pharmaceutical Intervention，
NPIs)が必須です。
参考資料
・<https://fm.cnbc.com/applications/cnbc.com/resources/editorialfiles/2021/07/30/
CDC̲slides.pdf>

・黒木登志夫 コロナウイルス arXiv(30)．<https://shard.toriaez.jp/q1541/045.pdf>

Q74）試薬ごと、施設ごとの Ct 値をどのように比較すれば良いですか。
A74）PCR 製品間、施設間の性能比較には、Ct 値を比較するのではなく、EQA など同一検体を測定した場合の検出結果などを用いて評価を行うことが望ましいと考えます。なおこの
場合、EQA の結果にはオペレーターの操作手技や抽出工程の有無などの製品特性を含む、複数の要因が合わさった結果であることを理解しておく必要があります。また、試薬ごと（試薬ロット間差）の比較には、内部精度管理が有効と考えます。検体をダイレクトに逆転写反50日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編

応およびリアルタイム PCR 反応にかける簡易抽出試薬の場合には、増幅曲線の立ち上がりの Ct 値を記録し、抽出ステップから１ステップ、あるいは２ステップでのリアルタイム PCR
反応で定量まで行う場合には、Threshold Line との交点の Ct 値を確認後、検量線の間隔や直線性、コントール試料の検出 Ct 値および定量値を記録し、管理図等でデータを管理していくことも精緻な内部精度管理になると考えられます。（松下）（吉本）
参考資料
・「新型コロナウイルス核酸増幅検査の精度管理ガイダンス」ＪCCLS 版。2021 年６月．67
ページQ75）COVID-19 のスクリーニングとしての無症状者への SARS CoV-2 核酸検査はどのように考えれば良いでしょうか。
A75）COVID-19 のスクリーニングを目的とした一般集団（無症状者を含む）を対象としたモニタリング検査としての PCR 検査数の指標については具体的なものはありません。2020
年初頭より、PCR 検査の感度が 70％という数字が独り歩きしており、無症状者の偽陽性や陽性者の対応（入院や宿泊施設あるいは自宅療養）の負担から、わが国では PCR 検査数を抑制する方針がとられて現在に至っています。
参考資料
・< https://ourworldindata.org/coronavirus-testing＞
総論（Q1、Q2）に記載したように感度には検査感度と診断感度があり、区別して議論する必要があります。無症状者へのスクリーニング検査については、検査前確率が低いことから、その有効性については様々な議論が続いています。
2021 年 8 月は１週間平均で PCR 検査の陽性割合は東京都の報告では 20％超が続いています。このことから、有症状者のみではなく、無症状者を含めた COVID-19 のスクリーニ
ングを目的とした PCR 検査等の核酸増幅検査、抗原検査の実施数については以下のような視点もあります。
１． PCR 検査陽性者のうち無症状の感染者の割合を考慮した検査数
２． PCR 検査実施者の陽性者の割合を考慮した検査数
例えば、PCR 検査陽性者のうち無症状の感染者の割合が１割程度であれば、無症状者の割
合が３割程度となるまで PCR 検査数を増やして感染者の地域的な分布を明らかにする、という考えです。同様に、PCR 検査実施者の陽性者の割合が 20％を超える場合には、5～10％程度となるまで検査数を増やす必要があるのではないでしょうか。限られた医療資源を有効に使用するためには、検査前確率が低い中で核酸検査数を増やすよりも、COVID-19 患者の医療介入への対応を優先させた方が良いという考え方もあります。2020 年に入り、国内では COVID-19 感染症に対するワクチン接種が開始されています。今後はゼロコロナを目指
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日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編

すのではなく、ワクチン接種を進めながらのいわゆるウィズコロナの時代になると言われています。ワクチン接種と無症状者への SARS-CoV-2 核酸検査の有効性のバランスについて、費用対効果も含めて継続的に考える必要があります。そのためにも COVID-19 感染症検査の基本となる SARS-CoV-2 核酸検査の標準化が重要と考えられます。
（松下）

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日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編

最近のトピックス
１．変異株の NGS による検査（石毛）新型コロナウイルスの変異検査として、リアルタイム PCR や塩基配列解析が用いられています。リアルタイム PCR は簡単な方法であり、既知の特定の変異（例えば、S 遺伝子のN501Y など）を調べる場合に有効です。未知の変異やより広範囲の遺伝子変異を調べる場
合には塩基配列解析が必要です。塩基配列解析としてはサンガー法や次世代シーケンシング（NGS 法）が行われます。NGS を用いた新型コロナウイルスの全ゲノム解析のプロトコー
ルの詳細は ARTIC NETWORK（https://artic.network/ncov-2019）により紹介されています。ARTIC の方法では約 30 kb の新型コロナウイルスゲノムを 98 対のプライマーを用いて増幅する multiplex tiling PCR が用いられています。解析されたデータを参照配列（NC̲45512）と比較することにより、どのような変異があるか、どの系統であるかを調べます。世界中でゲノム解析によるサーベイランスが行われており、その結果は公共のデータ
ベースである GISAID（Global initiative on sharing all influenza data）に登録されています（登録は任意）。登録日と系統より、その地域で流行している株を知ることができます（サンプリングバイアスなどにより真の頻度ではありません）。例えば、日本では、2021 年の 4～7 月頃はアルファ株が、それ以降はデルタ株が流行しています。

２． 検査部・検査室の現場スタッフ（初心者）へのトレーニングの実際
平井（浜松医大）、松永（富山大学）、池尻（三重大学）、石毛（千葉大学）【トレーニングに際して留意した点】（千葉大学）[新型コロナウイルスの基礎知識]· 検査者自身の感染防護· 検査材料として呼吸器材料が提出されること（喀痰などの場合には前処理が必要）· RNA ウイルスであるため RT-PCR により検出すること· 核酸の性質として RNA は分解しやすいこと[ピペット操作]· 微量の検体・試薬（酵素溶液などは粘性が高い）の取り扱い· コンタミネーション防止のためのフィルターチップの使用[機材の適切な使用方法]· 安全キャビネットでの検体処理· クリーンベンチでの試薬調製· サーマルサイクラー・リアルタイム PCR 装置の使い方[結果の解析]· 結果の判定方法（増幅曲線の見方）· 内部精度管理（内部標準遺伝子の増幅確認、陽性/陰性コントロールの確認）
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日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編【スタッフへのトレーニングの実際】（浜松医大）
まずは PPE の着脱について感染対策の重要性も含めて説明し、習得してもらいます。次に検体の種類（鼻咽頭か唾液）と検査の種類（抗原定性、抗原定量、PCR）を説明し、検体を受け取るときの確認するポイント（鼻咽頭ならウイルス輸送液にスワブが入っているか、
唾液なら量が足りているか、オーダーは正しいかなど）を伝えます。
実際の検査手技は SOP（添付文書やプロトコール）にそって説明します。検査を行う上で特に重要な安全キャビネットとクリーンベンチの違いやコンタミネーションを防止するためのピペット操作や検体の取り扱い方法と手指消毒の重要性について理解してもらいます。
検査原理と検査結果の見方（コントロールが正しく増幅または増幅していないか）と判定
基準について説明し、最終的には検査を検体受け取りから結果送信まで一人で行えるようになってもらいます。
以下のものはレクチャーする内容を箇条書きにしたものです。
〔検査前〕· PPE の着脱方法（感染対策の重要性）· 検体の種類（鼻咽頭か唾液か）· 検査の種類（抗原定性、抗原定量、PCR）· 検体受け取りの確認ポイント（鼻咽頭ならウイルス輸送液にスワブが入っているか、
唾液なら量が足りているか、オーダーは正しいかなど）〔検査〕· SOP（添付文書やプロトコール）にそった検査手技· 安全キャビネットとクリーンベンチの違い· コンタミネーションを防止するためのピペット操作や検体の取り扱い方法と手指消毒の重要性· 検査原理と検査結果の見方（コントロールが正しく増幅または増幅していないか）と
判定基準
〔検査後〕
· 試薬保管の温度や検体保存· コンタミネーション防止のための汚染除去方法【初心者へのトレーニングの実際】（富山大学）
当院検査部で初心者の方へ説明した際のポイントを下記にまとめました。
[新型コロナウイルスの基礎知識]· SARS-CoV-2 は RNA ウイルスであること· 本検査では SARS-CoV-2 の N 遺伝子の 2 領域（N1、N2）をターゲットに増幅を行う
こと[原理]· 試薬キットの内容（プライマー、蛍光標識プローブ、dNTP、DNA ポリメラーゼ、逆54

日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編

転写酵素 等）とそれぞれの役割について· プロトコールについて（逆転写、熱変性、アニーリング、伸長反応、蛍光測定）· リアルタイム PCR について（蛍光標識プローブを用いて増幅曲線を検出）· RT-PCR について（標的 RNA に相補的な cDNA を合成し、それを鋳型として PCR を
行うこと）
[検査前]
· PPE の装着（検査者の感染防止）· 作業ごと（前処理、試薬調整、試薬と核酸の混合）のエリア分け（安全キャビネッ
ト、クリーンベンチ）· それぞれのエリア専用のピペット、チップを用いること（コンタミネーション防止）· 検査前後の安全キャビネット、クリーンベンチ、器具等の清掃[検査]· 検査手順（検体受付から結果報告までの流れ）· ラベルと検体種（鼻咽頭拭い液）の確認[結果の解析]· 結果の判定方法（増幅曲線の立ち上がりの確認）· 内部標準コントロール、陽性/陰性コントロールによる内部精度管理· 増幅曲線の立ち上がりサイクル数とウイルス量の関係（ウイルス量が多いほど、早期に増幅曲線が立ち上がる）[手技]· ピペットの扱い方· PCR 検査におけるコンタミネーション防止の重要性· コンタミネーション防止のための手技について（手袋やチップを交換するタイミン
グ、PCR チューブ等の蓋の内側を触らないこと、蓋が開いている PCR チューブの上で手やチップを通過させないこと、フィルター付きチップの使用 等）· 操作を氷上で行うこと（RNA 分解防止）
３． 不顕性感染者の下水による検査（小林）COVID-19 感染の現行の臨床検査には、PCR 検査能力拡充の限界、無症状感染者の把握困難、陽性者に対する差別や偏見、感染から報告までに時間を要することなど、数多くの課題が散見されます。一方で、下水中に含まれる SARS-CoV-2 を分析する「下水疫学調査」
は、発症者/無発症者にかかわらず、生活排水である下水中に SARS-CoV-2 が集積することを利用して一度の検査で集団レベルでの感染流行状況の把握が可能であり、上記複数の課題を同時に克服する画期的な早期検知・大量検査法となり得る可能性が示唆され、COVID-19の世界的感染拡大により国内外で下水疫学調査が一挙に社会の注目を集めることとなりました。
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日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編【下水疫学調査】
下水疫学調査は、下水処理区域内に存在するあらゆる病原性微生物（SARS-CoV-2 などウ
イルスを含む）の痕跡を、感染者のうがいや排泄物などが下水処理場に集積するという下水道インフラの特性を活用して測定する調査です。下水中の SARS-CoV-2 など病原微生物を定期的に分析することで、特定の地域や建物における目的の病原微生物の侵入、流行状況、
分子疫学および流行収束を把握できる可能性があります。

【下水中の SARS-CoV-2 の検出技術の高度化】
日本は欧米と比較して感染者数が少ないために、従来の手法では下水中から SARS-CoV2 RNA の定性的な検出ができても、定量的なレベルでの測定、経時モニタリングが不可能でした。最近、アカデミアのみならず、複数の企業が産学連携にて下水中の SARS-CoV-2
RNA の検出技術の高度化とその技術を用いた実証調査を実施しています。具体的には、下水中 SARS-CoV-2 RNA の高感度検出技術の開発、自動解析体制の構築、変異株の検出、複数自治体におけるモニタリング調査などに取り組んでいます。実際に 2012 年 7 月、国土交
通省 水管理・国土保全局下水道部より複数の自治体にて採水し、同高感度技術を用いて測定された下水の SARS-CoV-2 RNA 濃度が公表されました。今後、新型コロナウイルス感染症対策の基本的対処方針に基づき、下水疫学調査を加速することが示されています。
参考資料
・<https://www.mlit.go.jp/mizukokudo/sewerage/mizukokudo̲sewerage̲tk̲
000721.html>【今後の展開】
下水疫学情報は、今後の COVID-19 の感染拡大防止と社会経済活動再開に向けた適切な政策決定のための判断材料の一つとして、また今後の感染流行の実態把握のためのツールとしての活用が期待されます。下水疫学調査は、COVID-19 に加えて将来起こり得る次なるパンデミックの際にも有効である可能性が高く、感染症に対して強靭な未来社会を構築する上で新たに整備すべき重要な社会インフラの一つであり、「感染症流行状況の監視」という新たな役割・価値が付加されることになります。SARS-CoV-2 との闘いが長期化する中で、感染拡大防止対策の新たなアプローチが求められている今、都市下水や施設排水を対象とした
下水疫学調査に関する研究や技術開発の加速と社会実装の早期実現が期待されます。
４． キット数の使用予測（副島）
キット数の使用予測するためには、厚生労働省から発出される通知等最新の情報を常に入手する必要があります。現段階で考慮すべき情報について、以下にまとめます。
(1) 「新型コロナウイルス感染症の検査体制整備に関する指針（令和 3 年 4 月 1 日 事務連絡）」より<https://www.mhlw.go.jp/content/000764740.pdf>（一部要約、202156日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編

年 11 月 1 日現在）
1) 通常の検査需要
通常最大時の 1 日当たりの検査需要＝過去最大時の 1 日当たりの検査需要を算出します。
a) 過去の 1 日当たりの検査実績の最大値b) 過去の 1 日当たり新規感染者数の最大値をその日の陽性率（ただし、当該陽性率が 10%を上回る場合にあっては 10%）で除した数値a)と b)を比較し、大きい方を用います。
2) 緊急的に検査体制を拡充する必要がある場合の検査需要（緊急時最大）1)-a)、1)-b)ともに 2 倍の数字。
3) 集中的検査（高齢者施設等）
高齢者施設等の集中的検査実施計画対象施設への積極的な受検の働きかけ等について（要請）（令和 3 年 5 月 10 日 事務連絡）より、各自治体から提出されている
高齢者施設等の集中的実施計画に基づいた実施報告書に検査数が公表されています。
4) 変異株対応の検査需要
変異株スクリーニング検査や、変異株の患者が発見された場合の濃厚接触者以外の幅広い関係者への検査などが想定されます。各地域の変異株対応の検査の実施状
況等を踏まえて、必要と見込まれる需要を計算してください。このような見込みを計算することが困難な場合には、例えば、上記 1）の基本の検査需要の少なくとも１割程度を見込むことなどを検討する。
(2) (1) 以外に、以下の内容に関して、検査を実施する場合があります。
1) 自治体ごとでの独自検査
東京都の場合、戦略的検査強化事業で以下の内容で実施しています。
· 感染者がいた場合にクラスターとなりやすい集団等に、定期的に検査を実施し、感染者を早期に探知。
· 比較的感染リスクの高い人流のある場所・交通結線などで検査を実施し、感染の予兆を探知。
2）職場における積極的な検査
令和 3 年 6 月 1 日付け事務連絡「職場における積極的な検査等の実施手順（第 2版）について」において、職場における抗原簡易キット等を活用した検査。
<https://www.mhlw.go.jp/content/000798697.pdf>
3）街角 PCR 検査を含む自主検査
4) ワクチン・検査パッケージにおける PCR 検査及び抗原定量検査
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日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編

内閣官房新型コロナウイルス感染症対策推進室からワクチンと検査を活用した日常生活の回復のために「ワクチン・検査パッケージ」の技術実証試験が 2021 年 11月まで行われています。その結果を踏まえ、実効性のある具体的な枠組みの構築に向けてワクチン・検査パッケージ等の制度設計が進められます。
ワクチン接種が進む中における日常生活の回復に向けた特設サイト<https://corona.go.jp/>（2021 年 11 月 1 日現在）
5) 変異株のゲノム解析について「新型コロナウイルス感染症の積極的疫学調査におけるゲノム解析及び変異株
PCR 検査について（要請）」（健感発 0205 第 4 号

令和 3 年 10 月 25 日一部改正）（http://www.hospital.or.jp/pdf/16̲20211025̲01.pdf、2021 年 11 月 1 日
現在）において、全国的にデルタ株に置き換わったため、L452R 変異株 PCR 検査は終了とし、様々な変異株の発生動向を広く監視するため、ゲノムサーベイランス
を中心とした体制へと変更となる旨の通知が発出されました。
ただし、デルタ株以外の新たな懸念される変異株が発生し、変異株 PCR 検査が必要になった場合、自治体において迅速に変異株 PCR 検査が再開できるように、体制を維持、また感染状況を踏まえた変異株 PCR 検査の実施について、以下のように行
えるよう、体制整備をお願いします。
・ 感染拡大地域（ステージⅢ相当、15 人/10 万人）未満又は変異の陽割合が８割未満の自治体においては、変異株 PCR 検査の実施率を新規感染者分の 40％程度とします。
・ 変異株 PCR 検査を実施することとなった場合には、感染拡大地域（ステージⅢ相当、15 人/10 万人）であって、変異株の陽性割合が 8 割に満たない自治体については、新規感染者分の 40％程度、又は都道府県ごとに 1,000 人/日を上限に変異株 PCR を実施することも可能といたします。
・ 感染拡大地域（ステージⅢ相当、15 人/10 万人）であって、変異の陽性割合が高い（8 割）自治体については、40%分の変異株 PCR 検査を必須としません。
５． 抗原定量検査と PCR 検査の比較（八木）現時点で新型コロナウイルス感染症（COVID-19）の病原体検査として厚労相より承認されている検査法は、核酸増幅検査（PCR 法など）と抗原検査があり、抗原検査は、その感度の違いより、抗原定性検査、抗原定量検査があります。各検査の特徴、その利用に関しては、
新型コロナウイルス感染症（COVID-19）の病原体検査の指針（第４版）にまとめられています。検査法の違いにより、推奨される検査対象（有症状者か無症候性）と適用可能な検体
種（鼻咽頭ぬぐい液、鼻腔ぬぐい液、唾液、下気道分泌液）に違いがあります。詳細は、指針の表 3（下表）にあります。

58

日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編＊1： 有症状者への使用は研究中。無症状者への使用は研究を予定している。
＊2： 使用可能だが、陰性の場合は臨床像から必要に応じて核酸検出検査や抗原定量検査を行うことが推奨される。
（△）＊3： 推奨されない。（－）＊4： 確定診断としての使用は推奨されないが、感染拡大地域の医療機関や高齢者施設等において幅広く検査を実施する
際にスクリーニングに使用することは可能。ただし、結果が陰性の場合でも感染予防策を継続すること、また、結果が陽性の場合であって医師が必要と認めれば核酸検出検査や抗原定量検査により確認すること。
＊：引き続き検討が必要であるものの、有用な検体である。
厚生労働省健康局結核感染症課「新型コロナウイルスイルス感染症（COVID-19）の病原体検査の指針（第４版）」より（出典）新型コロナウイルス感染症（COVID-19）病原体検査の指針 第 4.1 版。国立感染症研究所、国立国際医療研究センター、全国保険所長会、地方衛生研究所全国協議会、日
本感染症学会、日本環境感染学会、日本臨床衛生検査技師会、日本臨床検査医学会、日本
臨床微生物学会、厚生労働省健康局結核感染症課。2021 年 10 月 5 日．
抗原定量検査は、核酸増幅検査と同等の臨床精度（感度、特異度）があり、そのため核酸増幅法と同じ目的での使用が可能とされています。抗原定量検査は、核酸検査と異なる物質
を、異なる原理で検出、測定しているため、核酸検査と異なる注意が必要です。注意事項は、添付文書に記載されていますが、補足情報として、各メーカーから、個別のキットに関しての情報発信がなされています。本稿ではなるべく個別のキットの課題に言及することはせず、共通と考えられる項目について記載しているため、各メーカーから提供されている情報を巻末に付記したので参照してください。
抗原定量検査の感度と RT-PCR 法との感度の違いは核酸増幅法で最も感度が高いとされる RT-PCR 法と同等とされていますが、その絶対分析感度は低いです。承認品の添付文書からは、100～400 コピー/反応の検体における陽性一致率が RT-PCR と同等であることが示されており、標準法である感染研法に従った場合、概ね Ct 値が 32 以下であれば検出可能と考えられます。Ct 値 32～35 はキットによっては判定保留に相当します。Ct 値 35 以上
59日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編でも検出される例は多く報告されており、臨床症状等から考えても陽性と判断される例もあります。なお各論（分析後プロセス）の Q52～54 にあるように標準化されておらず、キット、試薬によって異なっており、また検体、RNA の標準化もなされていないことに留意が必要です。

【PCR 検査の Ct 値と抗原定量値との相関】
ゲノム RNA（gRNA）、
抗原定量検査で測定しているヌクレオキャプシドタンパク質（NP）、
いずれも、Virion に含まれており、生物学的には、その比は一定（gRNA：NP＝1：400～
500）（文献に基づく推定値）と考えられます。gRNA コピー数と NP 量の間には正の相関があると考えられ、実際に正の相関が報告されています（Ct 値とは負の相関）。しかし gRNA：
NP 比は検体によっては大きく異なっており、理論比よりも NP 比が高い場合が多いです。
一方、感染後期の検体などでは、NP の比が低くなる傾向が認められます。PCR の原理から、
RNA コピー数が低くなるほど定量性が低くなることなど定量性の問題が原因の一つとして考えられます、gRNA、NP いずれも、Virion 以外に、感染細胞の Necrosis で生じ、放出されるもの、他のコロナウイルスで観察されている不完全粒子、コロナウイルスの複製の際に産生される sgRNA（subgenomic RNA）、さらに検体中での gRNA と NP の安定性の違いなどが、差を生じさせる要因として考えられますが、今後ウイルス学的な解析が進むことによって明確になってくることが期待されます。

【抗原定量値の標準化】
キット間で異なる標準物質を用いており、それぞれの標準物質の値の関連に関する報告はありません。国際標準品に関しても検討が進められているようですが、何を標準品として用
いるかについては、前述のようにウイルス学的に不明な点が多々あること、抗原定量検査に用いるモノクローナル抗体によっては、NP の構造によって反応性が異なる場合が考えられること、ウイルスが変異を繰り返す中でどの株由来の材料を用いるのかなど、課題が多く、標準化は容易ではないことが想定されます。

【抗原定量検査を行う上で注意すべきことは何ですか？】 精度管理の重要性
抗原定量検査は、メーカーの推奨する方法により精度管理された測定機器を用いた場合にその性能が保証されていることから、メーカーの推奨する頻度、方法で測定機器のメンテナ
ンス、精度確認を行う必要があります。
 抗原定量検査を行うことができる検体種の違いは？
唾液検体が測定可能なキットは 1 種類のみである（2021 年 8 月 11 日時点）ことに留意しましょう。ただし、検査キットの改良に伴い、適用可能な検体種が変更される場合がある
ので、メーカーからの案内、メーカーへの問い合わせで確認するとともに、常に最新の添付文書と適用ロットの確認を行う必要があります。
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日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編

 PCR では検出されるが抗原検査で検出されない例としては？
感染後期の重症化例などでは、上気道（鼻咽頭、鼻腔、唾液）ではウイルスが検出されず、下気道分泌液、血液、排泄物などからのみ検出されることが報告されています。またブルターニュ株として報告された臨床例では、鼻咽頭ぬぐい液では陰性であったものの、下気道検体では陽性であったことが報告されています。下気道分泌検体は、抗原定性検査の臨床検体として承認されていないため、抗原定量検査の添付文書に従った方法では検出ができないことになります。ただし、原理的に抗原が検出できないことにはならないので、適当な希釈を行うことによって検出可能となることが想定されますが、メーカーの保証する範囲ではないので間違った判定となる可能性があります。
 検体の前処理
抗原定量検査キットにより、測定前の前処理方法が異なります。また複数の前処理が可能であるキットもあるため、メーカーの添付文書に記載されている方法に従うことが重要です。
 抗原定量試薬間での前処理方法の互換性
抗原定量検査は、メーカーの推奨する前処理剤、前処理方法だけを用いることが重要です。
施設検討の結果、キット間で前処理剤が使用可能と判断され、利用される可能性があります
が、メーカーはその使用を保証していない場合には、間違った判定結果となる場合がありえるため推奨されません。ただし、検査キットメーカーが検証し添付文書を改訂し利用可能となる場合も想定されるため、添付文書の改訂やメーカー案内を随時確認することが重要です。
 核酸検査用保存液、ウイルス不活化液などの前処理剤との互換性
核酸検査用の保存液、ウイルス不活化液などは、グアニジン塩やタンパク分解酵素、抗原
抗体反応を阻害する界面活性剤、塩、有機溶媒等が含まれることが多いため、抗原定量検査の原理であるイムノアッセイを阻害する可能性が高く、用いることができないと考えられます。メーカーによっては、具体例を含めて注意喚起されているので、メーカーの準備した案
内などを確認することが重要です。
逆に、抗原検査用の前処理剤によって処理した検体を核酸検査に用いることも推奨されません。抗原検査用の前処理剤は、ウイルス粒子の膜構造を破壊し、ヌクレオキャプシドタン
パク質を露出や遊離させるため、遊離した RNA は容易に分解される可能性があります。そのため、抗原検査用の前処理剤によって処理した検体を用いた核酸増幅検査は間違った判定となる可能性があり推奨されません。
 抗原陽性 PCR 陰性判定不一致について
抗原定量検査の臨床研究は、核酸検査による判定を正値とした判定で評価されてきている
ため、間違った判定の場合、抗原定量検査結果が間違っていると評価されてきました。しかし臨床現場では、核酸検査においても間違った判定となる場合があるため、確定診断においては、臨床症状に基づく判断が重要となります。しかし、これまでに臨床症状を加味した上で、明らかな抗原定量検査の偽陽性と判断される例も報告され、間違った検体の取り扱いに起因することもあり、添付文書、メーカーの提供する情報などを確認し、間違った判定につ61日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編

ながらないように留意することが重要です。検体種が異なった比較、同じ検体種でも核酸判
定と抗原検査が異なったサンプリング検体を用いている場合、検体採取法の違いによる判定不一致が起こる可能性があります。あらゆる検査法には、間違った判定になるリスクがある
ため、臨床データをもとにした診断が重要です。抗原定量検査において、検体の前処理による判定不一致が報告されています。キットメーカーの提供する情報を確認し、適切な前処理を行うことが求められます。
 核酸検査陽性・抗原検査陰性の判定不一致について
前述のように、抗原定性検査は PCR 法と比較した場合、絶対分析感度は低いです。そのため、原理的に核酸検査陽性・抗原検査陰性判定は抗原定量検査の LOD 以下で起こることは避け得ません。しかし、以下のような理由から、核酸検査陽性・抗原検査陰性の判定不一
致は、臨床上大きな問題ではなく、その特性を理解した上での運用が重要と考えられます。
感染性ウイルスは発症後期間とウイルス量に依存することが知られています。感染性ウイル
ス発症後 9 日、ウイルス量として Ct 値 34 以上ではほとんど検出されません。すなわち抗原定量検査、PCR 検査との陽性一致率は、ウイルス量に依存するとともに、発症後日数に大きく依存します。COVID-19 の第一波の頃には、感染後、臨床症状は寛解したにもかかわらず、PCR 法で持続的にウイルスが検出され、病床逼迫の観点から、持続的な PCR 検査陽性は退院基準の問題となっていましたが、現在では発症後 9 日経ち、臨床症状が寛解していれば、検査を行うことなく退院させることが可能となっています。これらのことを考え合わせると、COVID-19 患者において、発症後日数、臨床症状を考え合わせた判断は必要となりま
すが、核酸検査陽性・抗原検査陰性の判定不一致は大きな問題ではないと考えられます。一方、無症候性感染者、発症前の感染者に関してのエビデンスは十分とは言えないため、濃厚接触者の検査において、核酸検査陽性・抗原検査陰性の判定不一致が起こる可能性を否定できないことに留意すべきと考えます。しかし、別項の検疫での例を考えると、感度の違いによることだけではない要因の大きさにも、十分に留意すべきだと考えます。

各社から提供されたキットごとの注意事項【ルミパルス®・ルミパルスプレスト®SARS-CoV-2 Ag：富士レビオ株式会社提供情報】
 抗原検査の判定保留とは？
キットにより判定保留域が設定されていますが、これは臨床研究によって示されたカット
オフ値で陽性判定を行った場合に、抗原定量法陽性/RT-PCR 法陰性という判定不一致が認められたことにより設定されました。感染研法による RT-PCR との相関から、判定保留域
は、おおよそ RT-PCR 法の Ct 値 32～35 に相当します。測定値が判定保留域にあるときには、再検査を推奨しています。
 判定保留にあった場合にはどのようにするのが好ましいか
判定保留域の課題は、PPV（Positive predictive value）であるため、統計学的に、事前陽性確率により判定一致率は大きく変化します。感染が蔓延していない地域での有症候者を対象とした検査や、陰性がほとんどであると考えられるマススクリーニングなど、事前陽性確62

日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編

率の低い群を対象とする場合には、偽陽性判定につながるリスクが高くなります。
小林ら１）は臨床検体を用いた検討で見いだされた判定不一致例を下に、メーカーの推奨する検体の前処理をさらに厳しくするとともに、独自の判定保留域を設定し、判定保留域にある検体の RT-PCR 法での確認を推奨しています。
横田ら２）は、抗原定量検査と RT-PCR 法を組み合わせた、空港検疫での唾液検体を用いたマススクリーニング法を提唱し、空港検疫では、この方法を下に、独自のスクリーニン
グ法が適用されています。また東京オリンピック・パラリンピックでも同様のプロトコー
ルが導入されていました（アスリート・チーム役員公式プレイブック：2021 年 6 月、第 3
版）3）。
これらのことから、事前陽性確率が低い群を対象とする場合は、TAT に優れた抗原定量検査を一次スクリーニングに用い、判定保留域に対しては、抗原定量検査での再検査、RT-PCR
による二次検査などを組み合わせるのが有効であると考えられます。
 検体の前処理について
検体の前処理、例えば唾液の PBS や検体希釈液による希釈混合が不十分な場合、鼻咽頭
ぬぐい液や希釈後の唾液検体の遠心操作が不十分な場合、遠心後に上清を取り分けない場合、
鼻咽頭ぬぐい液を検体処理液で混合、抽出処理が不十分な場合には、粘性による検体吸引エ
ラー、粘性による反応夾雑物の吸引などを起こし、正しい判定が行われない場合があるため、添付文書に従った、正しい前処理を行った検体を用いて測定することが重要です。
 検体採取について
唾液と鼻咽頭ぬぐい液を用いた臨床研究では、唾液中の抗原量は鼻咽頭ぬぐい液中の抗原量と正の相関を示しましたが、その量比は検体によって異なっていました。また公表された情報ではありませんが、唾液で強陽性（抗原量が非常に多く PCR 陽性）にもかかわらず、
鼻咽頭ぬぐい液で陰性などの例の報告がカスタマーよりあり、抗原定量検査だけの課題ではありませんが、検体採取による判定不一致は起こるリスクがあるため、検体採取は、感染研から発出されている 2019-nCoV（新型コロナウイルス）感染を疑う患者の検体採取・輸送マニュアル ～2021/03/19 更新版～等を参考に、正しく取り扱うことが重要です。
参考資料
1）Kobayashi R, et al. Evaluation of false positives in the SARS-CoV-2 quantitative
antigen test. J Infect Chemother 2021； doi:10.1016/j.jiac.2021.06.019.
2）Yokota I, Shane PY, Teshima T. Logistic advantage of two-step screening strategy
for SARS-CoV-2 at airport quarantine. Travel Med Infect Dis 2021；43：102127．
doi:10.1016/j.tmaid.2021.102127.
3) <https://www.paralympic.org/sites/default/files/202106/The%20Playbook%20-%20Athletes%20and%20Officials%20-%20June%20
2021%20(JP).pdf>（2021/11/15 確認）。
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新型コロナウイルス感染症検査委員会編【HISCL® SARS-CoV-2 Ag 試薬：シスメックス株式会社提供情報】
抗原定量検査と PCR 検査との不一致要因、偽陰性、偽陽性に関しての注意喚起を示します。
 検査法による検体種の違い
当社製品の場合、PCR 検査と抗原検査では採取綿棒や不活化試薬が異なるため、厳密には異なる検体として取り扱うことが重要であると考えます。加えて、検体の採取時期のずれによっては患者の臨床背景を反映し、不一致は一般的に起こりうると考えられるため、判定・診断にあたっては総合的な判断が重要だと考えております。
■検体のサンプリングに関しての注意
 抗原検査の偽陰性要因：
適切に検体処理がされていないことが考えられます（例えば、当社 PCR 検査用不活化試薬を使用した場合、タンパク質が分解され偽陰性となることがあります）。
 抗原検査の偽陽性要因例：
推奨外の綿棒を用いた場合、検体の粘性が高くなり、偽陽性の頻度が増える場合があることが報告されてきております。可能な限り推奨綿棒を使用し、それ以外の綿棒を使用したい場合は、ご施設にて事前に検証いただきますようお願い致します。
 PCR の偽陰性による判定不一致
唾液中に含まれる夾雑物の影響による核酸増幅不良や、検体保存方法が不適切であったことによる核酸分解に起因する偽陰性などにより PCR 検査の偽陰性が生じ得るため、検体の取り扱いには十分にご留意ください。
 PCR の偽陽性による判定不一致
陽性検体や陽性コントロールの混入、検査環境下からの増幅産物のコンタミネーションなどにより偽陽性反応が生じ、判定不一致になることがあるため、検体の取り扱いに関しては十分にご留意ください。

【エクルーシス®試薬 SARS-CoV-2 Ag：ロシュ・ダイアグノスティックス株式会社提供情報】
本品において特に注意喚起させていただきたいのは、添付文書の【重要な基本的注意】の
5 にある以下の点となります。
『鼻腔ぬぐい液を検体とした場合、適切な検体採取が行われないと正しい結果が得られない可能性があるため、【操作上の注意】をよく読み、1 本のスワブで必ず両鼻腔から採取してください。
』
検査の性能を保持するため、鼻腔からの検体採取については、添付文書に記載されている
下図のように、必ず両鼻腔からの検体採取をお願い致します。

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日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編

６． 空港検疫における PCR 検査の話題（飯田）
抗原定量検査は大量処理および迅速性に優れる高感度な検査法です。株式会社 SRL が使用している検査試薬は富士レビオ株式会社の「ルミパルス/ルミパルスプレスト SARSCoV-2 Ag」で 2020 年 6 月より検査受託を開始しました。また、成田空港、羽田空港、
関西国際空港、中部国際空港、福岡空港の各空港検疫所においては検査機器、試薬および保証のサービスや検査管理システムを用いた包括的な検査サポートを、新千歳空港、那覇空港においては試薬や機器を 2020 年 8 月 6 日より供給しています。2021 年 4 月末時点
で、日本全国 8 の空港で 50 台の測定機（ルミパルスシリーズ）が稼働中です（図 1、2）。抗原定量検査は核酸増幅検査と比べても遜色ない感度がある上、大量処理が可能、短時間で結果が確認できます。このことから接触者外来、救急外来や手術前、病院や施設などで速やかに結果を求められる際の有用性に加え、空港検疫、スポーツイベントや屋内イ
ベント（音楽、劇場など）開催前などの陰性確認により、安全な環境の構築、文化や経済の活性化を継続するなどの社会的ニーズに応えることが可能となります。抗原定量検査の有効利用が今後の社会、経済の早期回復に貢献することが期待されます。
（飯田）

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日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編（飯田・八木）７．国内の COVID-19 感染症病原体検査能力とその活用について（八木）これまでの項目で、検査の重要性（数・精度）が述べられていますが、ここでは抗原定量
検査と PCR 検査を組み合わせた検査数、組み合わせた検査例として、空港検疫とオリンピック・パラリンピックの公表されているデータを基に、解析した結果をまとめてみます。
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新型コロナウイルス感染症検査委員会編【頻回検査は感染拡大抑制に有効か？（東京オリンピックのデータの解析より）】
頻回検査の有効性は、頻回検査が行われていた東京オリンピックのデータの解析が実際のケーススタディとして有効であると考えられます。オリンピック組織委員会からの解析デー
タ発表が望まれますが、ここでは簡単に解析した結果を記します。
オリンピックプレイブックによれば、参加者は、出発の 96 時間以内に新型コロナウイル
ス検査を別々の日に２回受検し陰性証明が求められていました。オリンピック組織委員会の発表によれば、入国前の PCR による陰性証明がある関係者 42,346 件のうち 35 件（0.09％）
が入国時陽性であったとのことです。
一方、その時期の空港検疫のデータでは、出国 72 時間以内の陰性証明が求められている
オリンピック関係者以外の外国籍の空港検疫での陽性率は 0.33％でした（2021 年 5 月 23
～7 月 3 日までの平均）。このことは、出国前のより頻回な検査、厳格な行動制限は、陽性率の低下に一定の効果を示したことが示唆されます。
さらに、選手および関係者は、毎日検査が行われ、毎日の頻回検査を繰り返す中で、248,677 件のうち 33 件（0.01%）が陽性判定とされており、入国時よりもさらに陽性率が低下しています。その結果、期間中クラスター発生が報告されなかったことから、頻回検査
は感染拡大抑制に有効であることが示唆されます。
ただ、頻回検査でも、完全に陰性化までに時間を要したことは、感染後の検出ウィンドウ期が長い COVID-19 検査の難しさを示しています。

【検査網羅性の重要性について（入国検疫検査公表データから見えてくるもの）】
入国検疫での陽性率動向を観察すると、日本国籍帰国者と外国籍入国者を比較した場合に、外国籍入国者において顕著な陽性率のピークがあり、ひときわ高いピークが 3 月～5 月に認められています（図-2A、B）。
この時期に感染者の多かった入国者の、入国前の滞在地域はインド、パキスタン、ネパー
ルなどですが、入国者は検査陰性証明を持っていたにもかかわらず、陽性率は 10％を超えており（図 3A）
、オリンピック関係者や、それ以外の時期の入国者の陽性率と比較して、著
しく高いものでした。
ここで、出国地の陽性報告者数と入国時の陽性数を比較すると、いずれの地域でも陽性者数がピークですので、入国者の高い陽性率は、これらの地域での SARS-CoV-2 蔓延が関連していると示唆されます。しかし、いずれの地域でも、報告数から類推される限り、10％を超えるような陽性率ではなく、また国間の陽性報告数には著しい違いがあります。このことは、地域による検査数（網羅性）の違いがあり、十分な量の検査が行われていない可能性が示唆されます。

【無症候者の検査陰性証明の有効性について】
オリンピック・パラリンピックでは、出国前 72 時間以内の検査陰性証明により、入国時には高い陰性率となっていることから、無症候者の COVID-19 検査による陰性証明は蔓延
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日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編防止に有効であることが示唆されましたが、一部の国において、入国時に高い陽性率であったことは、出国地の検査精度に問題がある可能性はあるものの、無症候者の検査陰性証明の有効性は、その地域の COVID-19 蔓延状況を考えた上で判断する必要があることを示しており、我が国の水際対策に反映されているものと思われます。

68日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編

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新型コロナウイルス感染症検査委員会編70日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編【大規模なスクリーニング体制とサーベイランスに関する動き】
オリンピックでのコロナウイルス対策のように、頻回の検査は、その後の陽性率低下に寄与することを示唆しています。サーベイランスには PCR、抗原定量検査に加え、抗原定性検査も利用可能であり、特に医療機関の負荷が低い抗原定性検査の活用が期待されています。
2021 年 3 月（第 3.1 版）と 6 月（第 4 版）の新型コロナウイルス感染症（COVID-19）
病原体検査の指針改訂により、抗原定性検査については、「確定診断としての使用は推奨されないが、感染拡大地域の医療機関や高齢者施設等において幅広く検査を実施する際にスクリーニングに使用することは可能」とされ、新型コロナウイルス感染症対策の基本的対処方
針の改訂により（「抗原定性検査を活用した検査戦略」（令和 3 年 5 月 6 日））、運用方法は異なるものの、高齢者施設や高校、専門学校への抗原定性検査キットが無償配布されることとなり、活用が開始されています。加えて、令和 3 年 9 月 27 日発の通達により、有症候者に対して、一般薬局でも承認検査キットの販売が可能となりました。

【検査陰性証明に対しての社会的認知の重要性】
空港検疫の例から、検査陰性証明だけで十分ではありませんが、頻回の陰性確認は、感染拡大抑制に寄与し、またクラスター抑制につながることと考えられます。一方、出国滞在地の違いによる入国検疫検査での陽性率の大きな違いは、出国地の蔓延状況、衛生管理の違い、陰性証明の検査精度などが重要であることを示していると思われます。
陰性証明の活用が検討されていますが、陰性証明に用いられた検査の精度、また精度の高い核酸検査や抗原定量検査であったとしても、陰性証明は、検査時の陰性証明にしか過ぎず、
感染蔓延状況などを十分加味した上で判断すべきであること、など検査に関しての啓発活動
が今以上に求められていると考えます。

8．核酸の精度、精度管理物質、コンタミネーション防止（タカラバイオ 大場）
新型コロナウイルスのリアルタイム PCR 検査の国際標準品としては、不活化ウイルス由来の WHO International Standard for SARS-CoV-2 RNA（NIBSC code:20/146）があります。こうした共通の物差しとなる標準品を整備することは重要で、国際標準品を用い値付けされた国内の標準物質は国立感染症研究所から入手可能です。また変異ウイルス株由来の参照パネルについても入手可能となる動きがあります。
コンタミネーションには、増幅産物の汚染（キャリーオーバーコンタミネーション）と検体やコントロール DNA や RNA の汚染（クロスコンタミネーション）があります。コンタミ
ネーション防止に関しては、本稿の Q＆A に繰り返し述べられています。特に、総論の Q2、Q4、Q9、Q12、各論（分析前プロセス）の Q23、Q25、Q34、各論（分析後プロセス）の
Q60、Q72 が参考になります。
例えば、キャリーオーバーコンタミネーションの防止策の一つとして、ウラシル-N-グリコシラーゼ（UNG）を反応系に添加することで、PCR 増幅産物のキャリーオーバーによる偽陽性判定を抑止する試薬があります。しかしながら、大量の PCR 増幅産物による汚染は71

日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編

防ぎきれない場合があります。このような場合やクロスコンタミネーションには、リアルタ
イム RT-PCR 反応液の調製は操作ごとに下記のようにエリア分けをして、物理的に隔離することが推奨されます。
・エリア 1：反応液の調製を行う・エリア 2：反応液と鋳型の混合を行う
また、リアルタイム PCR 法では増幅反応と検出をリアルタイムで行うため、反応終了後の増幅産物を電気泳動などで解析する必要はありません。しかし、コンタミネーション発生の原因となりますので、PCR 増幅産物の入ったチューブの開閉は避ける必要があります。

72日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編（参考資料１）解析法
１．Ct 値の算出方法
Ct 値の算出方法には、閾値と増幅曲線の交点を Ct 値とする方法（Crossing Point 法）の他に、増幅曲線の 2 次導関数を求めてそれが最大となる点を Ct 値とする方法があります（2nd Derivative Maximum 法）。前者では、閾値を指数関数的増幅域の任意の位置に（自動もしくは手動で）設定して解析しますが、その位置により Ct 値が変化するので実験間の誤差が大きくなりやすい傾向があります。一方、後者は、最も増幅速度の変化率が大きい時
点を Ct 値とするので、閾値により Ct 値が変化することがなく再現性が高く、また、装置の検出誤差による影響も排除できるため高精度な方法と考えられています。
（吉本）
しかし、後者の計算方法にも対応しているリアルタイムPCR装置は、Thermal Cycler
Dice Real Time System、Smart Cycler（以上、タカラバイオ社）や LightCycler（ロシュ社）など一部の装置に限られています。

２．検量線
スタンダードサンプルの希釈系列により得られた検量線は、未知サンプルの定量に適用できるだけでなく、そこからは、PCR増幅効率や定量可能な範囲など、有用な情報を得ることができます。実際に検量線を作成する際には、まず、５～６段階濃度のスタンダード
サンプルを用意します。次に、これらを鋳型としてリアルタイムPCRを行い、それぞれの73

日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編

濃度のCt値を算出します。Ct値と初期鋳型濃度の対数値は直線関係にあり、検量線を作成することができます。

【良い検量線とは】検量線を評価するポイントは、傾きと直線性の二つです。傾きからはPCR増幅効率を計算することができ、80～120％が適正範囲とされます。PCR増幅効率が悪い場合には、プライマーを再設計します。PCR増幅効率が理論値より高い場合には、逆転写反応またはPCRの阻
害物質の存在が疑われるので、試料の調製方法を再検討します。直線性は、相関係数（r2）で評価し、その値が0.98以上であることが望ましいです。低濃度あるいは高濃度のポイント
が直線からはずれる場合には、それらのポイントを除いて相関係数が0.98以上になるようにします。濃度に関係なくバラツキがあり相関係数が0.98に満たない場合は、実験系全体を見直したほうがよいです。リアルタイムPCRは精度の高い技法で、通常、検量線の直線性が問題となるようなケースはまれです。

【増幅効率の算出法】
リアルタイムPCR装置によっては、検量線の傾きから自動的にPCR増幅効率が算出されるものもありますが、検量線の傾きが分かっていれば、次のような数式を用いて自分で計算することもできます。ただし、検量線のX軸、Y軸の取り方と初期鋳型量を対数に変換したときの底により数式が異なるので注意します。
E ＝ 10[-1/slope]－1（X 軸に初期鋳型濃度(Log10)を Y 軸に Ct 値を取った場合）
現在は、検量線の傾きからPCR増幅効率を求めるのが一般的ですが、この方法では、①PCR
効率をoverestimateしがちであること、②個々のサンプルによりPCR阻害物の含量が異なる場合にはそれぞれPCR増幅効率が異なるがその対応が困難であること、などの理由から新しい PCR 増幅効率の計算方法も考案されています。それらの方法では、指数関数的領域の増幅曲線の傾きからPCR増幅効率を算出するので、検量線は必要ありません。スタンダード
サンプルの測定が不要で反応数を少なくできること、個々のサンプルについて PCR増幅効率を確認できることなどのメリットがあります。

【検量線作成用のスタンダードサンプル】
検量線作成用のスタンダードサンプルとしては、基本的に、目的遺伝子の配列を有してい
るDNAやRNAなら何でも使用できます（プラスミドDNAやin vitro転写産物など）。しかし、スタンダードサンプルと実際に測定する未知サンプルについてPCR増幅効率が一致していなくてはならないので、極端に形状が異なるDNAはスタンダードサンプルとして適当ではありません。例えば、ゲノムDNAに組み込まれた遺伝子のコピー数を定量するときに、プラス
ミドDNAをスタンダードとして使用すると正確な結果が得られないことがあります。これは、サイズが大きく複雑な配列を有するゲノムDNAと小さなプラスミドDNAとでは同じプライ
74

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新型コロナウイルス感染症検査委員会編

マーを用いてもPCR反応性が一致しないことがあるためです。
スタンダードサンプルとしては、できるだけ測定対象である実サンプルの形状に近いものが望ましいです。mRNA発現解析には目的遺伝子が発現している total RNA（あるいはtotal
RNA鋳型として合成したcDNA）を、SNPsタイピングにはWildタイプとMutantタイプのゲノムDNAをスタンダードとして使用します。このようなスタンダードの入手が困難な場合は、目的の配列を合成することになりますが、その場合にもプライマーがアニーリングする配列とPCR増幅領域だけでなくその前後の配列も少し加えた配列を合成すると良いです。
◎できるだけ実サンプルに近い形状のDNAまたはRNAがスタンダードとして望ましいです。

【RNAとcDNAのどちらを段階希釈するか】
リアルタイムRT-PCRでスタンダードサンプルとしてRNAを使用して検量線を作成する
場合、①逆転写反応によって得られたcDNAを段階希釈してリアルタイムPCRを行う方法と、②RNAを段階希釈して逆転写反応およびリアルタイムPCRを行う方法の２通りが考えられます。これらは似ているようですが、厳密には評価している内容が異なり、何を評価するかによっていずれか適切な方を選択すべきです。
①cDNAを段階希釈する方法
この方法で作成される検量線には逆転写反応は関係なく、純粋にPCR増幅効率を評価することができます。なお、適切なバッファー（EASY Dilution（for Real Time PCR）；製品
コード9160）で段階希釈したcDNAサンプルは、凍結融解を繰り返さなければ冷凍保存して後の解析に使用することができます。
②RNAを段階希釈する方法
この方法で作成される検量線は、鋳型RNAの量依存的な逆転写効率の変動とPCR増幅効率の両方を反映しています。①の解析と併せて行うことにより、逆転写反応の評価を行うことができます。同じ量のRNAを使用すると、理想的には①と②の検量線は一致すると考えられ、両者にズレが生じた場合、その部分は逆転写反応に起因するものと推測されます。
このようなズレがよく観察されるケースとして、鋳型RNA量が多すぎる場合が挙げられます。検量線を作成すると、最もRNA量が多いポイントだけ予想よりも逆転写の効率が低い
場合があり、この原因としては、RNA量が多すぎて十分に逆転写反応が行われなかった、または、RNAに逆転写反応を阻害するような物質が混入していたといったことが疑われます。いずれの原因であっても、このRNA量はこの系で使用可能な上限を超えてしまっていることが分かります。以上のように、②の検量線からは適切なRNA使用量を知ることができます。
実際のリアルタイムRT-PCR実験において重要なのは各プライマーによるPCRの増幅効率75

日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編であり、①の検量線を定量に用いるとよいでしょう。②の検量線からは適切なRNA使用量を知ることができますが、いつも同じ逆転写反応系を用いている限り、その範囲は大きく変動するものではありません。一度、確認しておけば十分で、RNAに逆転写反応阻害物質が混入している心配がない限り、毎回、実施する必要はないでしょう。
①の検量線では「逆転写の効率を無視している」と指摘されることがありますが、②の検量線の傾きも逆転写の効率を表している訳ではありません。①と②の検量線を比較すると、
RNA量依存的な逆転写効率の変動を確認することはできますが、逆転写効率の測定はできません。また、実際の発現解析では、一定量のRNAを用いてサンプル間の比較を行うので、RNAの量依存的な逆転写効率の変動があったとしても結果に影響を与えることは少ないです。そのRNA量が適正な範囲内であれば、それで良いということです。
◎ PCR増幅効率を知りたいときは、cDNAを段階希釈する。適切なRNA使用量を知りたい
ときは、RNAを希釈します。

３．融解曲線分析
増幅曲線の検出にインターカレーター（TB Green など）を用いる場合には、融解曲線分
析により増幅産物の確認を行うことができる。融解曲線分析では、PCR後にPCR反応液の温度を徐々に上げていき、インターカレーターの蛍光シグナルをモニタリングします。最初は、PCR増幅産物が二本鎖を形成し蛍光シグナルを発していますが、ある一定の温度に達すると一本鎖に解離し、インターカレーターの蛍光シグナルは急激に低下します。このときの温度が融解温度（Tm値）であり、増幅産物の配列に固有の値です。

【融解曲線分析と電気泳動】
以前に使用した実績のあるプライマーでは、融解曲線分析でPCR増幅産物のTm値を調べ、正しい増幅が行われたことを確認できますが、はじめて使用するプライマーでは、そのPCR
増幅産物のTm値が分からないので、融解曲線分析だけでは判断できません。新しいプライ
マーを用いるときは、融解曲線分析のTm値を調べるとともに、一度、PCR増幅産物を電気泳動して正しいサイズの断片が得られていることを確認しておきます。さらに、必要に応じて増幅産物のシークエンス解析まで行うこともあります。
単一の断片が増幅している場合には、通常、融解曲線はシングルピークとなります。融解76日本遺伝子診療学会
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曲線がブロードであったり、二つ以上のピークが出たりした場合には、非特異的増幅が起こっている可能性が高いです。例外的に、ピークの肩部分にマイナーピークがあるような場合には、それらのPCR増幅産物を電気泳動してみると、単一バンドとして検出されることがあります。これは、増幅した断片にGC含量などの偏りがあり、融解曲線分析の際に一気に解離しなかったためであり、この場合には、融解曲線分析がシングルピークにならなくても問題ありません。

４．絶対定量と相対定量
定量方法には、大きく分けて絶対定量と相対定量の２種類があります。絶対定量では、未知サンプルの絶対量（コピー数）を測定しますが、相対定量では、遺伝子の絶対量ではなく、ターゲット遺伝子とリファレンス遺伝子の測定を行い、リファレンス遺伝子に対するターゲット遺伝子の相対量を求めてサンプル間で比較します。

【絶対定量】
標準サンプルを用いて検量線を作成し、未知サンプルの絶対量を測定する方法です。絶対量（コピー数）が既知で、未知サンプルと同じ配列を持った標準サンプルが必要です。

【相対定量】
相対定量は、遺伝子発現解析で一般的に用いられており、ある遺伝子の発現量が未知サン
プルにおいてコントロールサンプルに対してどれだけ増減しているか、ということを解析する方法です。相対定量実験では、発現量を求めたいターゲット遺伝子の他に、必ずリファレンス遺伝子の測定も行います。リファレンス遺伝子は、サンプル間の鋳型量の標準化を行うためのものであり、遺伝子発現解析の実験では通常、ハウスキーピング遺伝子が用いられます（５．補正方法を参照）。解析時には、まず、リファレンス遺伝子の定量値を用いてサンプル間の鋳型量の標準化を行い、次に、標準化された値をコントロールサンプルと比較して発現量の変動を調べる（詳しくは、「６．相対定量解析の手順」を参照）。なお、相対定量には、検量線を用いて定量する一般的な方法の他に、検量線を用いずに定量できる方法もあります。

【検量線法】
スタンダードサンプルを用いて検量線を作成し、未知サンプルの濃度を決定する一般的な定量方法です。定量するすべての遺伝子について検量線を作成し定量します。

【ΔΔCt法】
ΔΔCt法では、検量線を作成せずに定量を行うことができます。ただし、測定するすべての遺伝子についてPCR増幅効率がほぼ一定であることが前提なので、予備実験を行い、各遺伝子についてPCR増幅効率を調べておく必要があります。
77日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編

５．補正方法
理想的には、サンプルあたりの細胞数または総mRNA発現量を測定して比較したいのです
が、それは現実的には不可能です。そこで、リアルタイムRT-PCRによる発現解析では、ハ
ウスキーピング遺伝子の発現量で補正を行うことが多いです。正確な解析結果を得るには、その実験系で発現量が変動しないハウスキーピング遺伝子を選んで用いることが重要であり、そのようなハウスキーピング遺伝子は、実験系ごとに異なるので、その都度、選びなおさなくてはなりません。

【ハウスキーピング遺伝子】
従来、ハウスキーピング遺伝子としては、GAPDHやβアクチンがよく用いられてきましたが、近年、これらの遺伝子も実験条件によっては変動するケースがあることが報告されています。１種類のハウスキーピング遺伝子では正確な補正を行うには不十分であり、現在、最も信頼性が高いとされている補正方法は、複数のハウスキーピング遺伝子を用いる方法です。
この方法では、いくつかのハウスキーピング遺伝子の発現量を測定し、その中で変動が小さいと思われるものを選択して使用します。最適な補正用遺伝子を選択するソフトウェアも開発されており、ダウンロードして利用できます（geNorm、BestKeeperなど）。マイクロア
レイによる発現プロファイルのデータがある場合には、その結果から類推することもできます。１種類のハウスキーピング遺伝子を用いるよりも信頼性は高くなりますが、非常に労力を要する方法です。

【Ribosomal RNA】
Ribosomal RNAが補正に用いられることもあります。28S rRNAと18S rRNAとでは、28S
rRNAの方がmRNAの補正に適しているとされます。それは、mRNAが分解を受けた際、18S
rRNAはインタクトな状態で残りやすく、mRNAの分解状態を反映しにくいためです。しかし、補正にrRNAを用いるには、いくつか問題点があります。まず、rRNAを転写するRNAポ
リメラーゼはmRNAのそれと異なるため、両者で発現の状態が異なっている可能性があります。そして、rRNAの存在量は、mRNAに比べて圧倒的に多いため、正確な補正ができるのか疑問です。また、rRNAにはpoly(A) tailがないので、oligo dTプライマーを用いる場合には、rRNAによる補正はできません。

【total RNA】
total RNAの量により補正する方法もありますが、濃度測定が正確に行われていることが前提です。また、total RNAに含まれるmRNAの量が一定とは限らず、そのようなことが保証できない実験系では適用できません。

６．相対定量解析の手順
通常の遺伝子発現解析では、ハウスキーピング遺伝子の発現量によりRNA量を補正して、78

日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編

目的遺伝子の発現量を相対定量します。ここでは、実験例を交えながら具体的な相対定量解
析の手順を解説します。

【モデル実験の内容】
3種類のRNAサンプル（A、B、C）について、“遺伝子 X”のmRNA発現量を比較します。
また、ハウスキーピング遺伝子として“遺伝子 H”の測定も行います。

【相対定量解析例】①遺伝子Xと遺伝子Hのそれぞれについて6段階濃度のスタンダードを用いて検量線を作成し、そこに未知サンプルA、B、CのCt値を当てはめて初期鋳型量を算出します。（＊1：定量結果）②鋳型として使用した3種類のtotal RNAサンプルは、mRNAの含量がそれぞれ異なる可能性があるので、ハウスキーピング遺伝子の発現量でmRNA量を補正します。具体的には、目的遺伝子（遺伝子 X）の定量結果をハウスキーピング遺伝子（遺伝子 H）の定量結果で割った値を求めればよいです。（＊2：補正値）③発現量の差を把握しやすいように、RNAサンプルA の発現量を“1”としたときの相対量で表します。（＊ 3：相対量）

79

日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編

既知量
スタンダード 1
スタンダード 2
スタンダード 3
スタンダード 4
スタンダード 5
スタンダード 6
RNA サンプル A
RNA サンプル B
RNA サンプル C

1
10
100
1000
10000
100000-

遺伝子 X
Ct 定量結
果＊1
35.66
32.77
29.20
25.75
22.06
18.62
27.22
343.4
31.70
17.3
24.62
1946.1

既知量

遺伝子 H
Ct

定量結果＊1

1
10
100
1000
10000
100000
-

37.46
33.06
29.69
26.10
22.51
18.88
23.17
22.70
22.93

6391.58589.77432.9

遺伝子 H

遺伝子 X

y = -1.1021x + 37.103

y = -1.0388x + 35.97

DNA 濃度（Log2）

RNA サンプル A
RNA サンプル B
RNA サンプル C

遺伝子 H
定量結果*16391.58589.77432.9遺伝子 X
補正値*20.05370.00200.2618Ct

Ct

DNA 濃度（Log2）

*1

定量結果
343.4
17.3
1946.1

相対量*3
1.000
0.037
4.874

実験例では、相対定量の結果から目的遺伝子 Xは、サンプル A を“1”とした場合、サンプ
ル B、C ではそれぞれ“0.037”、“4.874”に発現量が増減していることが分かりました。このように、相対定量は、同一遺伝子の発現量を異なるサンプル間で比較する方法であり、逆に、異なる遺伝子が同一サンプル内でどのような量比で発現しているかを正確に求めることはできません。相対定量で比較できるものとできないものをよく理解しておくことが重要です。
80

日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編【正しい組合せ】
チューブ②【誤った組合せ】
チューブ①
正しい組合せでマルチプレックス PCR を行うと、まったく同一の鋳型からターゲット遺伝子とリファレンス遺伝子を検出できるので、鋳型の分注誤差の影響を小さく抑えることができます。なお、マルチプレックス PCR の利点として試薬や鋳型の節約が挙げられることがありますが、解析する遺伝子数が多いほどそのような効果は薄れてきます。
（すべてのチューブでリファレンス遺伝子の測定を行うため、リファレンス遺伝子検出用のプローブ使用量は、かえって大幅に増えます）。また、マルチプレックス PCR の系構築は、比較的難しい作業でもあり、マルチプレックス PCR は、汎用的な解析にはあまり適していません。

誤差範囲の計算方法
誤差範囲の計算方法は、解析手法（検量線法/ΔΔCt 法、シングル PCR/マルチプレックス
PCR）によって異なります。シングルPCRの場合には、ターゲット遺伝子を測定したチューブとリファレンス遺伝子を測定したチューブとの間に対応関係がないため、個々の定量値を求めた段階で平均し標準偏差を求めます。マルチプレックスPCRでは、ターゲット遺伝子とリファレンス遺伝子を同一チューブで測定するため、対応関係が存在します。この場合には、リファ
レンス遺伝子の定量値でサンプル間の標準化を行った段階で平均し標準偏差を求めます。以後の相対定量解析で、平均値の除算や減算を行う際、標準偏差も専用の計算式に当てはめて演算します。計算方法の詳細は、User Bulletin #2（Applied Biosystems社）が参考になります。

参考資料
・<https://www.takara-bio.co.jp/research/prt/pdfs/prt1-3.pdf>（最終確認日：2021 年 11 月 16 日）

81日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編（参考資料 2）82

日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編

83日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編

84日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編（参考資料 3）

新型コロナウイルス感染症を指定感染症として定める等の政令等の一部改正について
感染症法における「感染症の分類」は疾病の分類であり、「病原体の分類」ではありません
い。これは医師（医療関係者）等が感染者を取り扱う時のための分類となります。病原体の「SARS-CoV-2」と、その感染症である「COVID-19」は同義ではないことの理解が必要です。新型コロナウイルス感染症は、昨年「指定感染症」に指定されました。「指定感染症」
は、暫定的な分類のため、2021 年 2 月 3 日に「新型インフルエンザ等感染症」に再指定されました（下記）。2021 年８月現在、SARS-CoV-2 は四種病原体等に分類され、COVID-19
は感染症法に基づく主な措置では新型インフルエンザ等感染症の取り扱いとなっています。
感染症の予防及び感染症の患者に対する医療に関する法律等の改正について（新型インフル
エンザ等対策特別措置法等の一部を改正する法律関係）
新型インフルエンザ等対策特別措置法等の一部を改正する法律（令和３年法律第５号。 以下「改正法」という。
）が本日公布されたところ、これに伴い、感染症の予防及び感染症の患者に対する医療に関する法律（平成 10 年法律第 114 号。以下「感染症法」という。
） 及び検疫法（昭和 26 年法律第 201 号）の一部が改正され、令和３年２月 13 日に施行されることとなりました。

85

日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編

感染症の範囲及び類型について。平成２６年３月、厚生労働省健康局結核感染症課。資料３より引用。
86日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編（参考資料 4）

遺伝子関連検査・染色体検査の精度確保にかかる留意事項について（出典）厚生労働省 HP より。
<https://www.mhlw.go.jp/content/10800000/000402691.pdf>（最終確認、2021 年 11 月 17 日）
遺伝子関連検査では上記のように、責任者の配置（義務）、内部精度管理の実施と適切な研修の実施（義務）、外部精度管理調査の受検（努力義務）となっています。ISO15189 な
どの第三者認定の取得は勧奨となっています。一方、検査室の遺伝子関連検査は必ずしも十分とは言えない状況で、厚生労働省の「新型コロナウイルス感染症の体外診断用医薬品（検査キット）の承認情報」<https://www.mhlw.go.jp/stf/newpage̲11331.html>（令和 3年（2021 年）８月 13 日）では、核酸増幅法は 34 品目が承認されています。抗原検査法は28 品目が承認され合わせて 62 品目が実臨床では使用されています。このように多数の新型コロナウイルス感染症の体外診断用医薬品を臨床検査の現場で使用するためには、各施設が改正された医療法の趣旨をよく理解して検査を実施する必要があります。

87日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編

参考文献
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改定，<http://www.jrcla.or.jp/info/info/310315.pdf>
2）宮地勇人．「国内PCR等検査の精度管理と国際的な現状と方向性について」
新型コロナウイルス感染症対策本部外国人観光客コロナウイルス対策PT．令和２年11月６日（金）
3）「新型コロナウイルス核酸増幅検査の精度管理ガイダンス」．公益社団法人日本臨床検査標準協議会，学術広告社．
4）「SARS-CoV-2（新型コロナウイルス）核酸検出検査の体制の課題対応について」．日
本臨床検査医学会，<https://www.jslm.org/committees/COVID-19/20200413-1.pdf>
5）新型コロナウイルスについてー遺伝子検査での注意点ー．
公益社団法人愛知県臨床検査技師会学術部遺伝子・染色体検査研究班
6）医療法改正等の経緯と検体検査の精度の確保に係る基準について．厚生労働省，<https://www.mhlw.go.jp/content/10800000/000402691.pdf>
7）改正医療法施行規則（検体検査関連）平成 30 年 12 月１日施行．
<https://www.mhlw.go.jp/content/10800000/000402682.pdf>
8）日本臨床検査標準協議会（JCCLS），遺伝子関連検査標準化専門委員会．新型コロナウイ
ルス核酸増幅検査の精度管理ガイダンス．日本臨床検査標準協議会 2021．P58．
9）三宅一德．臨床検査の偽陽性と偽陰性について.
<https://www.jslm.org/committees/COVID-19/20200427.pdf>
10）新型コロナウイルス感染症（COVID-19）病原体検査の指針

第４版．2021 年 6 月

4 日，<https://www.mhlw.go.jp/content/000790468.pdf>
11）東田修二．新型コロナウイルス検査の感度・特異度と結果報告の標準化．日臨検医会
誌 2021；69: 405-409．
88日本遺伝子診療学会
新型コロナウイルス感染症検査委員会編

12）新型コロナウイルス感染症（変異株）への対応．厚生労働省 新型コロナウイルス感
染症対策推進本部,<https://www.mhlw.go.jp/content/10900000/000793728.pdf>

13）Ishige T, Murata S, Taniguchi T, et al．Highly sensitive detection of SARS-CoV2 RNA by multiplex rRT-PCR for molecular diagnosis of COVID-19 by clinicallaboratories. Clin Chim Acta 2020；507:139-142.
doi: 10.1016/j.cca.2020.04.023. Epub 2020 Apr 23. PMID: 32335089;
PMCID: PMC7179514.
14）Kageyama T，Ikeda K，Tanaka S，et al．Antibody responses to BNT162b2
mRNA COVID-19 vaccine and their predictors among healthcare workers in a
tertiary referral hospital in Japan. Clin Microbiol Infect, in press.
15）認定 NPO 法人 21 世紀構想研究会
黒木登志夫先生から新型コロナウイルスに関するレポート，<https://www.kosoken.org/2021/02/%E9%BB%92%E6%9C%A8%E7%99%B
B%E5%BF%97%E5%A4%AB%E5%85%88%E7%94%9F%E3%81%8B%E3%
82%89%E3%81%AE%E3%83%AC%E3%83%9D%E3%83%BC%E3%83%88.
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新型コロナウイルス感染症検査委員会編

おわりに「はじめて新型コロナウイルスの核酸検査を行う方のために」は、日本遺伝子診療学会新型コロナウイルス感染症検査委員会の関係者が初めて SARS-CoV-2 核酸検査を臨床検査として手掛ける全国の初心者のために解説したものです。科学的に大きな誤りがないように関係者で相互に内容を確認しましたが、新型コロナウイルスの科学的な性状はまだ未解明の部分が多い状況です。また種々の検査に対するワクチン接種の影響などもほとんど論文報告がないため今後も改訂を行う予定です。ワクチン接種を進めながらのウィズコロナの時代になり、検査パッケージでは「陰性証明」が議論されています。そのためにも SARS-CoV-2 核酸検査の標準化が重要です。本書が現場の検査のお役に立つなら望外の喜びです。なお、本解説書の内容を引用する場合は、「日本遺伝子診療学会 新型コロナウイルス感染症委員会」
からの引用であることを明記していただけますと幸甚です。お気づきの点があれば、お気兼
ねなく日本遺伝子診療学会新型コロナウイルス検査委員会（松下一之：
kensa@office.chiba-u.jp）までご連絡をお願いします。

２０２１年１１月吉日
日本遺伝子診療学会新型コロナウイルス検査委員会委員長
千葉大学医学部病院検査部 松下

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一之