〔微探収報 24: 1–8, 2011〕

クリシギゾウムシ幼虫に強い病原力を有する
昆虫病原糸状菌の探索
井原 史雄・栁沼 勝彦
農業・食品産業技術総合研究機構 果樹研究所［〒305-8605 つくば市藤本 2-1］

Selection of entomopathogenic fungi having high pathogenicity
to the chestnut weevil larvae
Fumio IHARA and Katsuhiko YAGINUMA
National Institute of Fruit Tree Science,
National Agriculture and Food Research Organization
1. 目的
クリシギゾウムシ Curculio sikkimensis (Heller) はクリの主要な害虫であり，幼虫が果実内部を加害する．従来，本種の防除には収穫後の果実に対する臭化メチル燻蒸が利用されてきた．しかしながら臭化メチルはオゾン層破壊物質としてその使用が制限され，2003 年以降は不可欠用途申請をして認められた量だけが使用可能な状況にある．臭化メチルの代替としてヨウ化メチルの農薬登録がなされ市販化も近いが，一方で，燻蒸処理は処理作業の人体への危険性もあり，栽培段階での新
たな防除技術の開発が求められている．クリシギゾウムシ幼虫は果実内で加害・生長後，成熟した幼虫は果実から脱出し土中に潜り越冬する．越冬・休眠は多くの場合 1 年半に及び 2 年目の夏に羽化する．羽化時期は 8 月から 9 月，場合によっては 10 月までと長期にわたるため，薬剤散布では定期的に何回も散布する必要があり，効率的とはいえない．そこで，成熟幼虫が土中で越冬することに着目し，土壌中の昆虫病原糸状菌の分生子密度を高くしておけば，クリシギゾウムシの防除が可能であろうと考えた．
昆虫病原糸状菌は，生きた昆虫にとりつき，虫体内部で増殖し，最後には虫を死に至らせるカビの総称で．約 900 種が知られている．そのうち数種はすでに微生物農薬として主に野菜の施設栽培で導入されているが，果樹ではカミキリムシ防除のための Beauveria brongniartii 製剤が市販化されているに過ぎない．昆虫病原糸状菌の製剤化にあたり，いかに防除対象害虫に対する強い病原力を有する菌株を選抜するかが重要である．そこで，本研究では，クリシギゾウムシ幼虫に対し強い病原力を有する菌株を選抜し，その性質を明らかにした．なお，本成果の一部はすでに原著論文，-1-

解説などで発表している（Ihara et al.，2003；Ihara et al., 2009；井原，2010）．
2. 材料および方法
1）昆虫の調製
クリシギゾウムシ幼虫は，秋期（10 月初旬）に茨城県内で購入したクリ果実を室温で静置し，果実から脱出した成熟幼虫を回収した．幼虫は 3L 容の円筒形プラスチック容器に湿潤させたおがく
ずを詰め，その中に 300 個体を放飼し，冷蔵保存（6℃）した．この方法により，1 年間はクリシ
ギゾウムシ幼虫を安定して維持でき，通年試験を行うことができる．年により異なるが，クリ果実
100kg から 3,000～6,000 個体の幼虫を回収した．
クリミガ Cydia kurokoi (Amsel)幼虫はクリシギゾウムシ幼虫と同時期に果実から脱出してくる
ため，同様に回収した．クリから脱出し 24 時間以内の幼虫をそのまま生物検定に使用した．
クリシギゾウムシ成虫は，秋季に回収した幼虫を果樹研究所内にある網室の地面に放飼し，1 年半の休眠後，夏に羽化した成虫を回収して使用した．
2）昆虫病原糸状菌の調製
昆虫病原糸状菌の単離には，野外で昆虫死亡個体を採集し，その虫体を覆う分生子から直接単離する方法，および日本各地の土壌を回収し，研究室内で土とクリシギゾウムシ幼虫と接触させ，死亡した個体から単離する手法，を用いた．糸状菌の培養には，マルトース添加サブロー培地（SMY，培地 1L あたりマルトース 40g，バクトペプトン 10g，酵母エキス 10g を含む）を用い，固形培地として使用するときは寒天 1.5%を添加した．糸状菌の培養は 25℃で行った．単離した糸状菌は斜面培地に分生子を形成させた後，-30℃で保存した．糸状菌分生子は，固形 SMY 上で形成させたの
ち，0.2% Tween 80，0.89% NaCl で懸濁させた．
3）生物検定クリシギゾウムシ幼虫に対する病原力の検定は，2ml 容量のプラスチックカップに 20μlの分生子懸濁液（2×106，2×105，2×104 分生子量）を入れた後，クリシギゾウムシ幼虫 1個体を入れ，ふたをして 25℃暗所で静置し，24 時間毎に幼虫の生死を確認した（図 1）．
10 日後，死亡率を調べ，2×106 分生子量で高い死亡率が得られる菌株を選択した．それら

B.bassiana により感染死亡した個体について再度試験を行い病原性の高い菌株を選抜した．分生子量ごとに最低でも 50 個体の幼虫を使用した．対照には 0.2% Tween 80，
0.89% NaCl 溶液を用いた．
-2-

図 1．クリシギゾウムシ幼虫に対する病原力測定法

クリシギゾウムシ成虫，及びクリミガ幼虫に対する病原力の検定は，上述の方法で調製した分生
子懸濁液（2×108，2×107，2×106 分生子/ml）に 1 個体ずつ 10 秒間浸漬し，その後体表の余分な水滴をペーパータオルで取り除き，濾紙を敷いた径 90mm のプラスチックシャーレに 10 個体放飼した．対照には 0.2% Tween 80，0.89% NaCl 溶液を用いた．クリシギゾウムシ成虫については，市販の甲虫飼育用ゼリーを給餌し，25℃，16L8D 光条件下で飼育した．分生子濃度ごとに 50-120 個体の成虫を使用した(図 2A)．クリミガ幼虫についてはシャーレ内に 0.2ml 容のイエローチップ 20
本を入れ，チップ内に全ての幼虫が入るようにし，25℃，暗所で静置した．分生子濃度ごとに 30-50個体の幼虫を使用した．どちらも 24 時間毎に幼虫の生死を確認した（図 2B）．

図 2．クリシギゾウムシ成虫 (A) 及びクリミガ幼虫 (B) の接種試験
屋外試験では，茨城県つくば市の果樹研究所内のほ場に，50L の植木鉢を 1.5m 間隔で埋設した．
鉢底の穴は 1mm メッシュの金網で覆い，園芸用培養土（PROTOLEAF，(株)プロトリーフ）を入れた．秋期に糸状菌分生子懸濁液（1×1011，1×1010，1×109 分生子／鉢）を 5L の水とともに散布し，翌日，クリシギゾウムシ幼虫 300 個体／鉢を放飼した．分生子量ごとに 5 鉢試験し，6 ヶ月後に鉢の中の幼虫の生存率を調べた(図 3)．対照として 5L の水のみを散布した区を設定した．なお，捕食者による影響を除くため，試験中は 1mm メッシュの金網で鉢の上部を覆った（図 3，拡大図）．

図 3．クリシギゾウムシ幼虫に対する野外試験のため埋設した鉢-3-

3. 結果表１．実験に使用した菌株

1）昆虫病原糸状菌の単離

由東北から沖縄まで全国各地の土壌

来

種

名

菌株数

Beauveria bassiana

3を採取し，クリシギゾウムシ幼虫にMetarhizium anisopliae56

接触させた．25℃で 2 週間から 1 ヶPaecilomyces fumosoroseus

6

月程度静置し，糸状菌で死亡した幼土壌から昆虫死亡個体から（すべて Beauveria 属）

虫の表面に生じた分生子を培養し，65 菌株を単離した．菌株は形態的特
徴 か ら ， Beauveria bassiana ，Metarhizium

anisopliae

コウチュウ目

61

ハチ目

5

カメムシ目

5

その他（ハエ目、チョウ目、バッタ目）

5
合計

，

141

Paecilomyces fumosoroseus と 同定した（表 1）
．また，著者らは継続的に日本各地の森林などでの昆虫病原糸状菌の探索を行い，糸状菌の感染を受け死亡した昆虫を採集し，76 菌株を単離，収集している．そのうち，最も多かった
宿主はコウチュウ目で 61 菌株を単離した．またその中には種々のゾウムシ科昆虫由来の 14 菌株が含まれている（表 1）．
2）クリシギゾウムシ幼虫に対する病原力単離した昆虫病原糸状菌の病原力を検定するため，各菌株について菌量の異なる3 接種区（2×106，2×105，2×104 分生子量）を設け，クリシギゾウムシ幼虫（各区 10 個体）に接種した．その結果，
もっとも強い病原力を有する菌株として，B. bassiana MAFF 635036 株，M. anisopliae MAFF
635007 株を選抜した．両菌株の病原力を調べるため，各菌株の LD50 値（半数致死分生子量）および（半数致死時間）を求めたところ，M. anisopliae MAFF 635007 株の LD50 値は 6.8×103 分生子
量(接種 10 日後)，LT50 値は 7.4 日 (2×105 分生子/cup)，B. bassiana MAFF 635036 株の LD50 値．このこは 2.7×103 分生子量(接種 10 日後)，LT50 値は 7.8 日 (2×105 分生子/cup)であった（表 2）とから両菌株の 25℃における病原力は，ほぼ同程度であるといえる．

表２．クリシギゾウムシ幼虫に対する病原力
項目(アッセイ条件)

M. anisopliae MAFF 635007

菌株

B. bassiana MAFF 635036

25℃
LD50 (10日後)
5

3

3

3

3

3

3

6.8x10 (4.7x10 -9.8x10 ) 分生子量2.7x10 (1.6x10 -4.5x10 ) 分生子量

7.4 (7.2-7.7)日

7.8 (7.4-8.2)日

LT 50 (2x10 分生子/cup)
15℃
LD50 (30日後)
5

LT 50 (2x10 分生子/cup)

7

6

8

5

4

5

1.3x10 (2.5x10 -1.0x10 ) 分生子量

1.0x10 (5.0x10 -2.5x10 ) 分生子量32.2 (30.0-35.6) 日

15.8 (14.1–17.5) 日-4-3）選抜した菌株の比較選抜された 2 菌株について，病原力について詳細に検討した．まず，温度の影響を調べるため，15℃でクリシギゾウムシ幼虫に対する病原力を測定した．その結果，低温では 25℃での試験に比べて大きく異なった．すなわち，15℃の試験における LD50 値は B. bassiana MAFF 635036 株に比べて M. anisopliae MAFF 635007 株の値が約 100 倍高く，LT50 値に関しても M. anisopliae MAFF
635007 株の方が約 2 倍長い日数が必要であった（表 2）．このことは B. bassiana MAFF 635036
株は低温でも病原力をある程度高く維持しているが，M. anisopliae MAFF 635007 株は低温では急激に病原力を発揮できなくなることを示している．
両菌株の病原力をさらに調べるため，クリシギゾウムシ成虫及びクリミガ幼虫に対する病原力を調べた．クリシギゾウムシ成虫に対して，M. anisopliae MAFF 635007 株の LC50 値（半数致死濃度）は 5.0×106 分生子/ml(接種 10 日後)，LT50 値は 9.3 日 (2×107 分生子/ml)，B. bassiana MAFF
635036 株の LC50 値は 2.6×105 分生子/ml(接種 10 日後)，LT50 値は 6.1 日 (2×107 分生子/ml)であった（表 3）．また，クリミガ幼虫に対して，M. anisopliae MAFF 635007 株の LC50 値は 2.4×106 分
生子/ml(接種 10 日後)，LT50 値は 8.1 日 (2×107 分生子/ml)，B. bassiana MAFF 635036 株の LC50
値は 3.5×105 分生子/ml(接種 10 日後)，LT50 値は 5.5 日 (2×107 分生子/ml)であり（表 3），いずれも B. bassiana MAFF 635036 株の方が強い病原力を示した．
表3．クリシギゾウムシ成虫及びクリミガ幼虫に対する病原力
項目(アッセイ条件)

菌

M. anisopliae MAFF 635007

株

B. bassiana MAFF 635036

クリシギゾウムシ成虫(25℃)
LC50 (10日後)

6

6

7

5

5

5

5.0x10 (2.2x10 -1.1x10 ) 分生子/ml

2.6x10 (1.5x10 -4.3x10 ) 分生子/ml

9.3 (8.4-10.5) 日

6.1 (5.9-6.4) 日

7

LT50 (2x10 分生子/ml)
クリミガ幼虫(25℃)
LC50 (10日後)
7

LT50 (2x10 分生子/ml)

6

6

6

5

5

5

2.4x10 (1.3x10 -4.4x10 ) 分生子/ml

3.5x10 (2.2x10 -5.7x10 ) 分生子/ml

8.1 (7.6-8.8) 日

5.5 (5.2-5.8) 日

4）屋外での感染試験
クリシギゾウムシ幼虫はクリを加害して生長した後，クリから脱出して土中で休眠する．昆虫病
原糸状菌を効率よく感染させるためには，土中に糸状菌を施用するのが効率的であると考え，ほ場に設置した植木鉢を用いて，屋外での感染試験を行った．施用した菌の分生子量が比較的少ないと，幼虫の生存率は M. anisopliae MAFF 635007 株では 59.5％，B. bassiana
き（1×109 分生子量）
MAFF 635036 株では 70.2％と両菌株ともに高い値を示した(図 4)．しかしながら，1×1011 分生子
量を施用したときの生存率は M. anisopliae MAFF 635007 株では 24.9％であったのに比べて，B.

bassiana MAFF 635036 株では 2.9％と非常に低い値を示し，ほとんどの幼虫に感染して死亡させることができた．
-5-

100
B. bassiana MAFF635036

生存率 (%)

80

M. anisopliae MAFF635007

60

40

20

0

control

109

1010

1011

散布分生子量 (conidia)

図 4．屋外試験によるクリシギゾウムシ幼虫の生存率
4. 考察
1）強い病原力を有する菌株の選抜
本研究では，クリシギゾウムシ幼虫に対し強い病原力を有する菌株を選抜するため，141 菌株についてクリシギゾウムシ幼虫に対する生物検定を行い，M. anisopliae MAFF 635007 株と B.

bassiana MAFF 635036 株を選抜した．M. anisopliae MAFF 635007 株は茨城県内の土壌から分離された菌株であり，B. bassiana MAFF 635036 株は山形県の山中で採集したクヌギカメムシの死亡個体から分離された菌株である．昆虫の死亡個体から得た菌株の中にはゾウムシ類から発生した 14 菌株も含まれていたが，いずれの菌株もクリシギゾウムシ幼虫に対する病原力は低かった．
また，土壌から昆虫病原糸状菌を分離するときクリシギゾウムシ幼虫を使用したにもかかわらず，
そこから得られた菌株の病原力は，全てが強いわけではなく，様々であった．このことは，ある昆虫に対し強い病原力を有する菌株を得ようとする場合に，探索範囲は対象昆虫から得た菌株だけではなく様々な昆虫由来の多くの菌株を供試する必要があることを示唆している．そのためには，多くの菌株を対象昆虫に対して生物検定する必要があり，膨大な時間と労力が必要になる．昆虫病原
糸状菌が強い病原力を発揮するための因子は，プロテアーゼなどの菌体外酵素の関与が示唆されているものの(例えば Bidochka and Khachatourians,1990)，いずれも決定力とはなっていない．このような因子が解明され，強い病原力を発揮するための機構が解明されれば，菌株を育種し病原力を強化する手法も考えられ，菌株選抜の大幅な時間短縮が期待できる．
2）病原力と温度との関係選抜した 2 菌株は 25℃では同じように強い病原力を発揮したが，低温（15℃）では M. anisopliae
MAFF 635007 株の病原力は極めて弱かった．これは両菌株の生育至適温度の差に起因すると考えられる．B. bassiana MAFF 635036 株の SMY 寒天培地上での菌糸の伸長は 15℃でも良好なのに-6-

．Bidchka
対し，M. anisopliae MAFF 635007 株は 20℃以下では極端に遅くなる（未発表データ）

M. anisopliae は2タイプに分かれるとし，一方は8℃で増殖できるタイプ（cold active），
ら (2001)は，
もう一方は 37℃で増殖可能なタイプ（heat active）としている．これに従えば M. anisopliae MAFF
635007 株は heat active タイプであるといえる．このことは，屋外試験で M. anisopliae MAFF
635007 株を施用した幼虫の生存率が高くなっていることにも関連している．茨城県つくば市にある果樹研究所の土壌の温度は，秋季（9-10 月）は表面から 20cm の深さで 15℃前後であり，その後 1 月にかけて徐々に 5℃まで低下する（Higaki, 2005）．このことは，屋外試験で，B. bassiana
MAFF 635036 株施用区の効果が高かったことと矛盾しない．
3）クリシギゾウムシ防除
クリシギゾウムシに対する微生物防除手法を検討するとき，成熟幼虫が土中で休眠することを考慮すると，土中の糸状菌密度を高めておき，幼虫が土に潜るときに感染させるのが効果的と考える．
その場合，野外試験の結果から，B. bassiana MAFF 635036 株の方が防除素材として適しているといえる．また，クリシギゾウムシと同時に発生するクリミガ幼虫に対しても B. bassiana MAFF
635036 株の方が強い感染力を示すことも，この菌株の方が優れている．さらに，B. bassiana MAFF
635036 株はクリシギゾウムシ成虫に対しても病原力を有しているので，羽化成虫が土中から出現するときにも感染することが期待できる．ただし，秋季に施用した糸状菌が翌年 8～9 月の羽化時期まで安定に維持されるかなど，解明すべき点もある．今後 B. bassiana MAFF 635036 株の諸性質を解明しつつ，微生物農薬として使えるよう，施用方法も考えながら開発していきたい．
5. 参考文献
Bidchka, M. J., Kamp, A. M., Lavender, T. M., Dekoning, J. and Amritha De Croos, J. N. (2001).
Habitat association in two genetic groups of the insect-pathogenic fungus Metarhizium

anisopliae: Uncovering cryptic species? Appl. Environ. Microbiol. 67: 1335–1342.
Bidochka, M.J. and Khachatourians, G.G. (1990). Identification of Beauveria bassiana
extracellular protease as a virulence factor in pathogenicity toward the migratory
grasshopper, Melanoplus sanguinipes. J. Invertebr. Pathol. 56: 362–370.
Higaki, M. (2005). Effect of temperature on the termination of prolonged larval diapause in thechestnut weevil Curculio sikkimensis (Coleoptera: Curculionidae). J. Insect Physiol. 51:
1352–1358.
Ihara, F., Toyama, M., Higaki, M., Mishiro, K. and Yaginuma, K. (2009). Comparison ofpathogenicities of Beauveria bassiana and Metarhizium anisopliae to chestnut pests.
Appl. Entomol. Zool. 44: 127–132.
Ihara, F., Toyama, M. and Sato, T. (2003). Pathogenicity of Metarhizium anisopliae to thechestnut weevil larvae under laboratory and field conditions. Appl. Entomol. Zool. 38:
461–465.
-7-

井原史雄 (2010). クリ害虫に対する微生物防除資材として期待される昆虫病原糸状菌. 果実日本
65: 74-77.

Summary
To control the chestnut weevil, Curculio sikkimensis (Heller) (Coleoptera: Curculionidae), we
tried to select entomopathogenic fungi having high pathogenicity to the chestnut weevil larvae
as the microbial control agent. Metarhizium anisopliae MAFF 635007 and Beauveria bassiana
MAFF 635036 showed the high pathogenicity. The pathogenicities of both strains at 25℃ weresimilar; LD50 values and LT50 values of M. anisopliae MAFF 635007 and B. bassiana MAFF
635036 were 6.8×103 and 2.7×103 conidia (10th day after treatment) and 7.4 and 7.8 days
(2×105 conidia/cup), respectively. The pathogenicity of B. bassiana MAFF 635036 at 15°C
remained high, whereas that of M. anisopliae MAFF 635007 was greatly reduced. Its
pathogenicity to chestnut weevil adults and nut fruit moth, Cydia kurokoi (Amsel)(Lepidoptera: Tortricidae), was also higher than those of M. anisopliae MAFF 635007. In fieldtests, the survival rates of chestnut weevil larvae decreased to 2.9% when B. bassiana MAFF
635036 was applied at 1×1011 conidia/pot. But when M. anisopliae MAFF 635007 was appliedat the same conditions, 24.9% larvae remained. The high pathogenicity of B. bassiana MAFF
635036 makes the strain a potential microbial agent for the control of chestnut pests.

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微生物遺伝資源の調査プロフィール

Beauveria bassiana MAFF 635036 株に感染して死亡したクリシギゾウムシ成虫（井原）ライグラスいもち病の病徴（栃木県那須塩原市）（月星）

モモ樹に発生した材質腐朽菌 3 種の子実体（1，カワラタケ； 2，
アラゲカ
ワラタケ； 3，スエヒロタケ）（中村）

キクピシウム立枯病の病徴（茨城県東海村）（月星）

ダイズシストセンチュウが寄生したダイズ根（相場）

納豆菌ファージ MAFF 270115（永井）