The Journal of Farm Animal in Infectious Disease
Vol.3 No.1 2014

PREVENTIVE EFFECT BY ORAL ADMINISTRATION OF TILMICOSIN

原著論文

呼吸器病多発子牛育成農家における導入時チルミコシン経口薬の疾病予防効果と飼養管理の違いがその効果に及ぼす影響
松田敬一
宮城県農業共済組合連合会

家畜診療研修所（〒 981-3602 宮城県黒川郡大衡村大衡字平林 39-4）
TEL：022-345-2239

FAX：022-345-0891

E-mail：matsuda@nosaimiyagi.or.jp［要約］ホルスタイン種雄子牛育成農家は、輸送ストレスなどにより農場に導入した直後より肺炎などの感染症が多発する。そこで、導入当日の子牛に持続性の抗生物質であるチルミコシン経口薬を投与して疾病予防効果を調査した。調査対象牛は、平成 23 年 1 月の家畜市場において管内 3 子牛育成農家に導入されたホルスタイン種雄子牛 33 頭とし、導入当日にチルミコシン経口薬を投与した 17 頭を投与群、未投
与の 16 頭を対照群とした。各群ともに導入時、7 日目、30 日目に採血、T.P.R および体重を測定した。
血液からは、一般血液検査、血液生化学検査、急性相蛋白を測定した。導入時と 7 日目に鼻腔スワブを採取し病原細菌の検出を行った。また、農家ごとの飼養管理状況、各群における疾病発生頭数を調査した。対照群は投与群に比べて、7 日目での心拍数、呼吸数および白血球数が有意に高く、30 日目でのTcho が有意に低く、NEFA およびα1AG が有意に高い値を示し、病原性微生物の検出数および疾病発
生頭数が多くなる傾向が認められた。本研究の結果より、導入時のチルミコシンの経口投与は、疾病発
生頭数や細菌感染数が減少し、栄養評価の項目が高い値を示したことから、導入直後の子牛に対して一定の疾病予防効果があると考えられた。しかし、低栄養の牛では 7 日目でも病原細菌が検出され、群編成等のストレスが加わる時期に疾病発生数が増加した。牛はストレスや低栄養で免疫力が低下することから、使用した抗生物質の効果を最大限発揮させるためにも、導入時の疾病予防対策においては、牛の免疫状態を考慮に入れた飼養管理が必要になると考えられた。
キーワード：子牛、チルミコシン、栄養、ストレス、病原細菌［緒では死亡することもあるため、子牛育成農家の論］

経営に大きなダメージを及ぼしている。特にホ子牛育成農家においては、家畜市場から導入

ルスタイン種雄子牛育成農家は、飼養環境の異後に呼吸器病を発症する牛が散見される［3，6，なる複数の酪農家から家畜市場を通して若齢の24］。牛における呼吸器病の多くは、牛呼吸器

哺乳子牛が導入されており、輸送ストレス［9，症候群と呼ばれ［1］、様々な病原体や牛の免疫

15，25］や導入後の群構成ストレス［16］など状態が関与する複合病であり［4，8，22］、一により農場に導入した直後より呼吸器病などの度発症すると発育不良になることが多く重症例

感染症が多発する。この導入直後の感染症は、導入後にワクチンプログラムを実施しても防ぐことができず、またこの時期における感染症へ

受付：2013 年 11 月 22 日
受理：2014 年   1 月 20 日の罹患が免疫低下を引き起こし、新たな感染症－9－

家畜感染症学会誌
3 巻 1 号 2014

子牛育成農家における導入時チルミコシン経口薬の効果発生の要因となることが考えられる。そこで、態は、導入後個別ハッチで数日～数週間飼育、

今回我々は導入直後の呼吸器病が多発していその後 5 頭の中グループで 1 ヶ月飼育。約 2 かる、飼養形態の異なる 3 農家において、子牛に月飼育後、離れた別の牛舎に移動し、10 頭のおける呼吸器疾患の予防に活用され［17］、持グループで出荷まで飼育。移動時期は牛の大き続性の抗生物質であるリン酸チルミコシン（ミさを優先して決定していた。給与飼料は、個別

コラル経口液、日本全薬工業株式会社、福島）

ハ ッ チ で の 飼 育 期 間 中 は、 代 用 乳（TDN：［12，18］を経口投与して疾病予防効果を調査

110％以上、CP：24％以上）を 800 g/日、人工した。

乳（TDN：75％以上、CP：20％以上）を 100～500 g/日、チモシー乾草 200 g/日であり、群［材料および方法］

飼 で は、 子 牛 育 成 飼 料（TDN：70 ％ 以 上、
CP：16％以上）、稲ワラおよびチモシー乾草の調査農場：調査協力農場の概要は以下のとお

自由採食であった。

りである。なお 3 農家ともにワクチン接種方法は同様であり、導入翌日に 5 種混合生ワクチン

調査期間および供試牛：調査期間は、2011（牛 5 種混生ワクチン、株式会社微生物科学研

年 1 月～2 月までの 2 ヵ月間とし、2011 年 1 月

究所、京都）を接種、導入 1 ヶ月後に 5 種混合に家畜市場において調査対象の子牛育成農家に不活化ワクチン（ストックガード、
ゾエティス・

導入されてきた、外見上から疾病等の罹患が認

ジャパン株式会社、東京）を接種していた。まめられないホルスタイン種雄子牛 33 頭を用いた、3 農家ともに導入直後から呼吸器病が多発た。農場毎の内訳は以下のとおりである。Aする傾向が認められていた。

農場（試験区・対照区各 6 頭）：導入日齢 29.1

A 農場：平均飼養頭数は、約 120 頭。飼養±9.2 日、導入体重 60.5±5.1 kg。B 農場（試験形態は、導入後個別ハッチで 1 ヶ月飼育、その区・ 対 照 区 各 5 頭 ）： 導 入 日 齢 24.3±10.0 日、後 6 頭のグループで 1 ヶ月飼育。約 2 か月飼育

導 入 体 重 61.3±5.5 kg。C 農 場（ 試 験 区 6 頭・後、隣の牛舎に移動し、12 頭のグループで出

対照区 5 頭）：導入日齢 32.3±7.8 日、導入体重荷まで飼育。移動時期は導入後日齢を優先して65.0±10.5 kg。調査対象牛として選定した哺乳決定していた。給与飼料は、個別ハッチでの飼子牛を無作為に 2 群に分け、導入直後から 3 日

育期間中は、代用乳（TDN：109％以上、CP：

間、リン酸チルミコシン（チルミコシン）を25％以上）を 800 g/日、人工乳（TDN：75％

6.25 mg/kg の用量で朝夕 2 回、代用乳に混合

以上、CP：20％以上）を 100～500 g/日、チモして投与した 17 頭を投与群（導入日齢 27.3±5.3

シー乾草 200 g/日であり、群飼では、子牛育日、導入体重 60.5±7.6 kg）とし、非投与の 16

成 飼 料（TDN：70 ％ 以 上、CP：16 ％ 以 上 ）、頭を対照群（導入日齢 30.3±7.5 日、導入体重

稲ワラおよびチモシー乾草の自由採食であっ64.2±7.0 kg）とした。
調査方法：各群ともに導入時（0 日目）、導た。
B 農場：平均飼養頭数は、約 100 頭。飼養形

入 7 日後（7 日目）、導入 30 日後（30 日目）に態は、導入後個別ハッチで 1 ヶ月飼育、その後採血、体重測定、身体検査、体温、心拍数、お3 頭のグループで 1 ヶ月飼育。約 2 か月飼育後、よ び 呼 吸 数 を 測 定 し た。 採 血 し た 血 液 は、隣の牛舎に移動し、6 頭のグループで出荷まで

EDTA 加採血管およびヘパリン加採血管に分飼育。移動時期は導入後日齢を優先して決定し注し、一般血液検査および血液生化学検査をていた。給与飼料は、個別ハッチでの飼育期間行った。0 日目および 7 日目に各農場の各群 2

中 は、 代 用 乳（TDN：109 ％ 以 上、CP：25 ％頭ずつより鼻腔スワブを採取し、病原微生物の以上）を 500 g/日、人工乳（TDN：75％以上、検出を行った。また、農家ごとの飼養管理状況、

CP：20％以上）を 100～700 g/日、チモシー乾各群における疾病発生頭数（呼吸器病、消化器

草 200 g/日であり、群飼では、子牛育成飼料

病）、30 日間の平均日増体重（DG）を調査した。

（TDN：70％以上、CP：16％以上）、稲ワラお加えて、各農家における飼養管理の違いによるよびチモシー乾草の自由採食であった。

測定日毎の疾病発生要因を検討した。
血液一般検査：白血球数、赤血球数、血小板C 農場：平均飼養頭数は、約 150 頭。飼養形－ 10 －

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PREVENTIVE EFFECT BY ORAL ADMINISTRATION OF TILMICOSIN

数、およびヘマトクリットについて動物用血球の方法による多重比較を実施し、危険率 5％未自動計算装置（LC-152、HORIBA、京都）を満となったものを有意差ありとした。

用いて測定した。

［結血液生化学検査：総コレステロール（Tcho）、

果］

遊離脂肪酸（FFA）、尿素窒素（BUN）、総タ

体重は、両群ともに 0 日目に比べて 7 日目おンパク質（TP）、アルブミン（Alb）、およびア

よび 30 日目で有意に増加した。導入 1 ヶ月間

スパラギン酸アミノトランスフェラーゼの平均 DG は投与群が 0.75±0.27 kg/day、対照（AST）を測定した。また、急性相蛋自として群が 0.67±0.27 kg/day であった。体温、心拍数、

C-reactive protein（CRP）［13，26］および al-

呼吸数の推移では、対照群が投与群に比べて、

pha-1-acidglycoprotein（αlAG）［10，20］ を

7 日目の心拍数および呼吸数が有意に高い値を測定した。Tcho、FFA、BUN、AST、および示した（表 1）。体温に有意な変化は認められ

GGT は酵素法、TP は Biuret 法、
Alb は BCG 法、なかった。
血液一般検査では、対照群が投与群に比べてCRP は PETIA 法、 お よ びα1AG は SRID 法

7 日目の自血球数が高い傾向を示した（表 2）。

を用いて測定した。
鼻腔スワブからの病原微生物の検出：鼻腔深赤血球数、ヘマトクリット、および血小板数に部から採取した鼻腔スワブ液を、輸送用培地（細有意な変化は認められなかった。血液生化学検

菌 用：Tryptic Soy Boroth、Mycoplasma 用：

査では、対照群が投与群に比べて、30 日目のDNA 加 Hayflick Broth） に 添 加 し て 輸 送 後、総コレステロールが有意に低く、NEFA が有培養および DNA の調整を行い、以下の 8 種類

意に高い値を示した。また、急性相蛋白質であの病原微生物について、PCR 法を用いて検出るα1AG は 30 日目で有意に高い値を示した（表を行った。Pasteurella multocida、Mannheimia3）。BUN、Alb、AST、および A/G 比には有haemolytica、Histophilus somni［2］、Arcano-

意な変化は認められなかった。

bacterium pyogenes［28］、Mycoplasma bovis

各群における鼻腔スワブからの病原細菌の検［21］、Mycoplasma bovirhinis［29］、Mycoplas-

出数では、対照群が 0 日目で 7 株と 7 日目で 7 株、

ma dispar、Ureaplasma diversum［11］。

および投与群が 0 日目で 6 株と 7 日目で 3 株であった（表 4）。

統計方法：得られた結果は平均値±標準偏差で示した。
同じ採材ポイントの各群間の比較は、疾病発生頭数では、対照群が 7 日目においてF 検定を用いて等分散とされたものには stu-

呼吸器病 2 頭および消化器病 5 頭であったのにdent の t 検 定、 非 等 分 散 と さ れ た も の に は対して、投与群では呼吸器病 0 頭および消化器

Mann-Whitney の U 検定を用いて行い、危険病 3 頭であった。30 日目では、対照群におい率 5％未満となったものを有意差ありとした。

て呼吸器病 4 頭および消化器病 7 頭であったの

また、各群における 0 日目とその後の採材日とに対して、投与群では呼吸器病 1 頭および消化の比較は一元配置分散分析をおこない Tukey

器病 4 頭であった。

Table 1 Change of body weight and vital signs in two groups
0day

7days

30daysBody weight(kg)

Control group64.2±7.671.4±8.4**

84.3±12.2**

Treated group60.5±7.0

70.1±8.6**

83.1±7.7**

Body temperature(℃)

Control group38.7±0.539.1±0.8

39.0±0.5

Treated group38.5±0.438.6±0.438.9±0.4

Pulse rate
(count/min)

Control group106.9±18.8108.4±25.7

95.1±15.5

Treated group94.9±21.8

90.5±17.2※

93.2±17.6

Breathing rate
(count/min)

Control group35.3±9.0

37.9±12.934.3±8.630.4±8.8※29.6±8.9

Treated group

Date are expressed as the mean±S.D.
**; P＜0.01 vs. 0day.
※ ; P＜0.05 vs. control group.

－ 11 －

27.8±4.0

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3 巻 1 号 2014

子牛育成農家における導入時チルミコシン経口薬の効果

Table 2 Change of complete blood count in two groups
0day

7days

30daysWhite blood cell(×102/μℓ)

Control group120.5±49.4

136.3±63.6

116.6±32.6

Treated group121.7±25.3

100.6±23.1※

110.1±19.9

Red blood cell(×106/μℓ)

Control group875.3±235.5

964.0±224.5

325.6±486.2

Treated group951.4±169.3

1050.3±212.1

365.8±504.7

Platelet(×103/μℓ)

Control group81.3±15.3

91.0±28.9

707.7±459.6

Treated group88.9±22.8

83.6±16.2

516.4±345.6

hematocrit(%)

Control group31.1±9.734.3±9.933.3±6.6

Treated group35.3±7.1

38.3±9.1

36.1±5.9

Date are expressed as the mean±S.D.
※ ; P＜0.05 vs. control group.

Table 3 Change of blood biochemistry and acute phase proteins in two groups
0day

7days

30daysTcho(mg/dℓ)Control group103.9±42.5

78.4±37.962.3±20.7**

Treated group95.7±30.2

95.4±29.0

80.0±27.8※

FFA(μEq/ℓ)Control group424.7±143.4

327.3±120.0

237.3±132.6**

Treated group460.8±238.5

388.9±106.3

156.2±50.1**※

BUN(mg/dℓ)Control group11.08±4.72

13.86±4.30

8.46±3.71

Treated group9.61±4.25

10.99±5.16

9.05±4.45

TP(mg/dℓ)Control group5.91±0.42

5.99±0.34

6.16±0.39

Treated group5.85±0.44

5.79±0.52

6.02±0.42Alb(mg/dℓ)Control group3.46±0.30

3.48±0.30

3.51±0.16

Treated group3.35±0.19

3.39±0.25

3.50±0.16

AST(IU/ℓ)

Control group51.6±17.1

48.0±10.865.8±13.5

Treated group58.4±15.950.5±8.1

67.2±18.0

CRP(mg/dℓ)Control group0.094±0.027

0.093±0.032

0.114±0.035

Treated group0.082±0.019

0.106±0.017

0.111±0.023

α1AG(μg/mℓ)Control group

321.9±103.6

383.1±198.7

513.8±314.2

Treated group303.5±168.3

322.4±119.5

333.5±136.3※

Date are expressed as the mean±S.D.
**; P＜0.01 vs. 0day.
※ ; P＜0.05 vs. control group.

Table 4 Number of the bacterial detection from nasal cavity swab samples
Bacterial detection

Treated group

Control group

0day

7days

0day

7days

Pasteurella multocida

1/6

1/6

1/6

4/6

Arcanobacterium pyogenes

1/6

0/6

1/6

0/6

Mycoplasma bovirhinis

2/6

2/6

1/6

1/6

Mycoplasma dispar

2/6

0/6

3/6

2/6

Mannheimia haemolytica, Histophilus somni, Mycoplasma bovis, and Ureaplasma diversum were not detected.

各農家別の結果：結果を各農家で比較すると、していた（表 6）。導入後数日～数週間で移動

栄塞管理が比較的良好な A 農家では、疾病発を行い大きな牛群を構成させる C 農家では、生頭数は少なく、投与群の 7 日において病原細個別ハッチで飼育していた牛には疾病発生はほ菌の検出は認められなかった（表 5）。栄養管とんど認められないが、5 頭の群飼にした後に理にバラつきが認められる B 農家では、投与

疾病発症が多発した。7 日目での飼養形態によ群の 7 日においても病原細菌が検出され、総コる総コレステロール値は、個別飼育が 89.4 mg/

レステロールは 56 mg/dL と著しく低い値を示

dL、5 頭群飼が 52.4 mg/dL であり、群飼牛に－ 12 －

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PREVENTIVE EFFECT BY ORAL ADMINISTRATION OF TILMICOSIN

Table 5 Bacterial detection from nasal cavity swab samples in Farm A
Treated group0day
Calf number

Control group
7days

0day

7days

no,1

no,2

no,1

no,2

no,7

no,8

no,7

no,8

Pasteurella multocida

－

－

－

－

－

－

＋

＋

Arcanobacterium pyogenes

－

－

－

－

－

－

－

－

Mycoplasma bovirhinis

－

－

－

－

－

－

－

－

Mycoplasma dispar

＋

－

－

－

＋

－

－

－

Total cholesterol (mg/dl)

89

98

109

82

68

109

80

78

Albmin (mg/dl)

3.3

3.4

3.3

3.6

3.2

3.4

3.5

3.5

Bacterial detection

Blood biochemical findings

Table 6 Bacterial detection from nasal cavity swab samples in Farm B
Treated group0day
Calf number

Control group
7days

0day

7days

no,3

no,4

no,3

no,4

no,9

no,10

no,9

no,10

Pasteurella multocida

－

－

－

＋

－

－

－

－

Arcanobacterium pyogenes

－

－

－

－

－

－

－

－

Mycoplasma bovirhinis

＋

－

＋

－

－

－

－

－

Mycoplasma dispar

－

－

－

－

－

－

－

－

Total cholesterol (mg/dl)

89

93

56

70

80

82

118

133

Albmin (mg/dl)

3.1

3.2

2.9

3.0

3.2

3.3

3.3

3.4

Bacterial detection

Blood biochemical findings

Table 7 Bacterial detection from nasal cavity swab samples in Farm C
Treated group0day
Calf number

Control group
7days

0day

7days

no,5

no,6

no,5

no,6

no,11

no,12

no,11

no,12

individual

individual

hard

individual

individual

individual

individual

hard

Pasteurella multocida

＋

－

－

－

－

＋

＋

＋

Arcanobacterium pyogenes

＋

－

－

－

－

＋

－

－

Mycoplasma bovirhinis

＋

－

＋

－

＋

－

＋

－

Mycoplasma dispar

＋

－

－

－

＋

＋

＋

＋

Total cholesterol (mg/dl)

106

71

58

80

125

149

74

52

Albmin (mg/dl)

3.5

3.1

3.3

3.2

3.6

3.6

3.4

3.2

Breeding management
Bacterial detection

Blood biochemical findings

おいて栄養状態が悪かった。また、移動後であ頭数が少ない傾向が認められ、チルミコシンのる 30 日 目 で 群 平 均 の 総 コ レ ス テ ロ ー ル が導入直後の投与は、呼吸器病多発農家における51.5 mg/dL、NEFA が 344μEq/L と著しい低導入時疾病予防対策として、一定の効果がある

栄養状態を示し疾病発生数が増加した（表 7）。

ものと考えられた。

［考

呼吸数および心拍数が、対照群の 7 日目にお察］いて投与群に比べ有意に高い値を示していたの本試験の結果より、チルミコシンを投与したは、投与群では呼吸器病の発生が認められな投与群は無投与の対照群に比べて、7 日目およかったのに対して、対照群で呼吸器病の発生がび 30 日目の両日で呼吸器病や消化器病の発生認められたことが影響していると考えられた。

－ 13 －

家畜感染症学会誌
3 巻 1 号 2014

子牛育成農家における導入時チルミコシン経口薬の効果

また、牛は細菌感染やストレス等により白血球結果では、投与群においてチルミコシンにおけ数が増加することが知られており、本試験におる抗菌活性が持続すると期待されている 7 日目

いて白血球数が対照群の 7 日目で投与群に比べで、3 頭の鼻腔スワブより病原微生物が検出さ有意に高い値を示したことは、呼吸器病や消化れた。そこで、各農家における検出状況を確認

器病の発症や、そのストレスが影響しているもすると、栄養管理が良好な A 農家では投与群のと考えられた。牛において Tcho は栄養状態の 7 日目に病原微生物の検出は認められず、栄や飼料摂取量の指標として用いられており、飼養管理にバラツキがある B 農家では投与群の 7

料摂取不足等の低栄養状態で低下する［14］。

日目で総コレステロール値が低値を示した牛にまた、FFA は牛のエネルギーバランスを示す

おいて病原性微生物が検出された。子牛におい指標として用いられており、負のエネルギーバて栄養状態と免疫力には密接な関係があること

ランスの時に増加する［23］。30 日目において、が知られており［19］、本試験において総コレ

対照群が投与群に比べて Tcho が有意に低く、ステロール値が著しい低値を示していた牛は、FFA が有意に高かったこと事は、対照群では栄養状態の悪化により免疫力が低下していたも30 日目に低栄養による負のエネルギーバランのと推察される。チルミコシンを含むマクロラ

ス状態にあったためと考えられた。これは、対イド系の抗生物質は、免疫細胞により感染局所

照群の疾病発生頭数が多いことによる飼料摂取に運ばれる性質があるため［27］、低栄養状態

量の減少や、下痢等による消化および吸収不良では抗生物質の効果が低下する可能性があるとが影響しているものと考えられた。α1AG は、考えられた。また、C 農家では 30 日目に総コ

急性相蛋白質であり外傷性心膜炎、肺炎、ウイ

レステロール値が著しい低値を示し、A およ

ルス性下痢症などの強い炎症を伴う疾病においび B 農家に比べて疾病発生数が多かった。子て増加し、450μg/mℓ以下が正常値とされてい牛は群飼のストレスにより免疫力が低下するこる［7］。本研究の結果より、30 日目においてとが知られており［16］、本農家で行われてい対照群が投与群に比べ有意に高い値を示しておる早期の群飼により牛が大きなストレスを受けり、その値は 513.8±314.2μg/mℓと、正常値て栄養摂取不足に陥り疾病発生数が増加していの上限を大きく上回っていた。このことより、るものと考えられた。これらの結果より、使用

対照群は 30 日目において炎症性疾病に罹患しした抗生物質の効果を最大限発揮させるためにていたと考えられ、投与群より多く発生していも、導入時の疾病予防対策においては、牛の免た呼吸器病（肺炎）や消化器病（腸炎）がその疫状態を考慮に入れた飼養管理が必要となると原因であることが示唆された。また、チルミコ考えられた。

シンは好中球のアポトーシスを誘発し、ネク［謝

ローシスによる周囲組織への蛋白質分解酵素の辞］

放出を抑制して、炎症による組織障害の増悪を本試験に対して御指導、御協力をいただいた

防ぐと報告されており［18］、この作用も投与関係各位に深謝すると共に、試験資材の御提供

群のα1AG の安定推移に影響している可能性

および検査協力をしていただいた、日本全薬工がある。

業株式会社に対して深謝する。

チルミコシンはマクロライド系の抗生物質で［引用文献］あり［27］、牛肺炎の主な原因菌である Mycoplasma bovis、Mannheimia haemolytica およびPasteurella multocida 等の［5］幅広い病原微生物に抗菌活性を持つ抗生物質で、本試験で鼻腔スワブ内から検出された病原微生物に対しても抗菌活性があるとされている。また、チルミ
コシンは持続性の抗生物質であり［12，18］、
長時間好中球やマクロファージの中に存在し抗菌作用を発揮すると報告されている。本試験の－ 14 －

1． Charles A. 1996. The Bovine Respiratory Disease Complex. Hjerpe. Current Veterinary
Thrrapy 3. Food Animal Practice. WB Saunders Company, Philadelphya, pp653-664.
2． Christensen H, Bisgaard M, Larsen J, Olsen
JE. 2003. PCR-detection of Hemophilus paragallinarumu, Hemophilus somnus, Mannheimia
hemolytica, Mannheimia spp., Pasteurella trehalosi, and Pasteurella multocida. Methods

The Journal of Farm Animal in Infectious Disease
Vol.3 No.1 2014

PREVENTIVE EFFECT BY ORAL ADMINISTRATION OF TILMICOSIN

Mol Biol. 216: 257-274.
3． Duff G, Galyean ML. 2007. BOARD-INVITEDREVIEW: Recent advances in managementof highly stressd, newly receivd feedlot cattle. J. Anim. Sci. 85: 823-840.
4． Gershwin LJ. 2007. Bovine respiratory syncytial virus infection: immynopathogenic mechanisms. Anim. Health. Res. Rev. 8: 207-213.
5． Gourlay RN, Thomas LH, Wyld SG, Smith CJ.
1989. Effect of a new macrolide antibiotic(tilmicosin) on pneumonia experimentally induced in calves by Mycoplasma bovis andPasteurella haemolytica. Res Vet Sci. 47: 8489.
6． 市川憲一．1987．導入直後の肉用牛の呼吸器病．畜産の研究．41（7）．865-867．
7． 伊藤 博．1996．ウシ血清α1 ─酸性糖蛋白の性状とその臨床測定意義．東北家畜臨床研
誌．19：44-54．
8． 河田裕司郎，山本久光，渡辺 博．2007．事
故低減対策として子牛へのマンヘミア・ヘモ
リチカ（1 型）感染症不活化ワクチン投与の効果．家畜診療．54：547-551．
9． Kegley EB, Spears JW, Brown TT Jr. 1997.
Effect of shipping and chromium supplementation on performance, immune response, anddisease resistance of steers. J. Anim. Sci. 75:
1956-1964.
10． Kleczkowski M, Kluciińskil W, Jakubowski T,
Sikora J. 2006. Dependence between acutephase response, oxidative status and mastitisof cows. Pol J Vet Sci. 9: 151-158.
11． Kobayashi H, Hirose K, Worarach A, Paugtes
P, Ito N, Morozumi T, Yamamoto K. 1998. In
vitro amplification of the 16S rRNA genes
from Mycoplasma bovirhinis, Mycoplasma alkalescens and Mycoplasma bovigenitalium by
PCR. J Vet Med Sci. 60: 1299-1303.
12． Laven R, Andrews AH. 1991. Long-acting antibiotic formulations in the treatment of calf
pneumonia: a comparative study of tilmicosin
and oxytetracycline. Vet Rec. 129: 109-111.
13． Lee WC, Hsiao HC, Wu YL, Lin JH, Lee YP,
Fung HP, Chen HH, Chen YH, Chu RM. 2003.
Serum C-reactive protein in dairy herds. Can
J Vet Res. 67: 102-107.
14． 松田敬一．2011．黒毛和種肥育牛における代謝プロファイルテスト．家畜診療．58：651660．
15． 松田敬一．大塚弘通．2011．黒毛和種牛の冬季トラック輸送に対する保温ジャケットの効
果．日本家畜臨床感染症研究会誌．6：1-8．

16． 松田敬一，大塚弘通．2013．移動後の飼養環境の違いが子牛の免疫力に与える影響．宮城県獣医師会会報．66：178-182．
17． Morck DW, Merrill JK, Thorlakson BE, Olson
ME, Tonkinson LV, Costerton JW. 1993. Prophylactic efficacy of tilmicosin for bovine respiratory tract disease. J Am Vet Med Assoc.
202: 273-277.
18． Musser J, Mechor GD, Gröhn YT, Dubovi EJ,
Shin S. 1996. Comparison of tilmicosin withlong-acting oxytetracycline for treatment of
respiratory tract disease in calves. J Am Vet
Med Assoc. 208: 102-106.
19． Ohtsuka H, Fukunaga N, Fukuda S, Hatsugaya
A, Hayashi T, Hara H, Koiwa M, Abe R,
Kawamura S. 2005. Effect of nutritional conditions on changes in leukocyte populationsin Japanese black calves. J Vet Med Sci. 67:
183-185.
20． Ohtsuka H, Kudo K, Mori K, Nagai F,
Hatsugaya A, Tajima M, Tamura K, Hoshi F,
Koiwa M, Kawamura S. 2001. Acute phase
response in naturally occurring coliform mastitis. J Vet Med Sci. 63: 675-678.
21． Pinnow CC, Butler JA, Sachse K, Hotzel H,
Timms LL, Rosenbusch RF. 2001. Detectionof Mycoplasma bovis in preservative-treatedfield milk samples. J Dairy Sci. 84: 1640-1645.
22． Rice JA. 2007. Manheimia haemolytica andbovine respiratory disease. Anim. Health.
Res. Rev. 8: 117-128.
23． Sato H, Matsumoto M, Hanasaka S. 1998. Relations between Plasma Acetate, 3-Hydroxybutyrate, FFA, Glucose Levels and Energy
Nutrition in Lactating Dairy Cows. J Vet
Med Sci. 65: 447-451.
24． 佐藤良彦，佐藤友吾，青柳高弘，木内英昭，
小澤尚．2001．導入直後に見られた肥育牛の呼吸器複合感染症例．畜産の研究．55．33-38．
25． Schaefer AL, Jones SD, Stanley RW. 1997.
The use of electrolyte solutions for reducing
transport stress. J. Anim. Sci. 75: 258-265.
26． Schrödl W, Krüger M, Hien TT, Füldner M,
Kunze R. 1995. C-reactive protein as a newparameter of mastitis. Tierarztl Prax. 23: 337341.
27． Thomas RS, Joel EM, Michael B. 1998. The
effects of macrolides on the expression ofbacterial virulence mechanisms. J Antimicrob
Chemother. 41: 505-512
28． Ulbegi-Mohyla H, Hijazin M, Alber J, Lämmler
C, Hassan AA, Abdulmawjood A, Prenger-－ 15 －

家畜感染症学会誌
3 巻 1 号 2014

子牛育成農家における導入時チルミコシン経口薬の効果

Berninghoff E, Weiss R, Zschöck M. 2010.
Identification of Arcanobacterium pyogenes
isolated by post mortem examinations of abearded dragon and a gecko by phenotypicand genotypic properties. J Vet Sci. 11: 265267.

29． Vasconcellos Cardoso M, Blanchard A, Ferris
S, Verlengia R, Timenetsky J, Florio Da
Cunha RA. 2000. Detection of Ureaplasma diversum in cattle using a newly developed
PCR-based detection assay. Vet Microbiol. 15:
241-250.

Preventive effect about the respiratory disease by the oral administration of tilmicosin
at calf introduction, and influence of the difference in breeding management
Keiichi MATSUDA

Miyagi Prefecture Federation of Agricultural Mutual Aid Associations Livestock Medicine Training Center
39-4 Hirabayashi, Ohira-Aza, Ohira-Mura, Kurokawa-Gun, Miyagi 989-3602, Japan
TEL: 022-345-2239 FAX: 022-345-0891
E-mail: matsuda@nosaimiyagi.or.jp[Abstract]
I investigated the preventive effect of the disease by the oral administration of tilmicosin which is asustained antibiotic in the calves at the introduction day. The calves were 33 male Holstein from 3
farms. 17 calves were divided in treated group which were orally administered the tilmicosin at the
introduction day, and 16 calves were divided in control group which were not treated. The calves ineach group were collected the blood samples and measured the clinical findings and body weight on
day 0, 7 and 30 after introduction. The blood samples were measured complete blood count, blood biochemistry and acute phase proteins. Nasal cavity swab were collected and detected the pathogenic
microbe on day 0 and 7 after introduction. In addition, I investigated the breeding management situation and the number of calves affected the disease. The numbers of heart rate, respiratory rate and
WBC in treated group were significantly higher than those in control groups on day 7. Furthermore,
Total cholesterol was significantly lower, and non-esterified fatty acid and α1- acid glycoprotein weresignificantly higher in treated group than those in control group on day 30. The number of calves
which detected the pathogenic microbe and affected by the disease tended to a lot in control group.
These results indicated that oral administration of tilmicosin at introduction of calves has a preventive effect against the disease. However, the calves with hypoalimentation were detected the pathogenic microbe on day 7. In addition, the number of diseased calves was increased at the time whenaffected the stress such as group formation. Because the immune function of calves was decreased by
the stress and hypoalimentation, it is necessary the breeding management to prevent the disease after consideration about the immunity state of calves.
Key words: Calf, Nutrition condition, Pathogenic microbe, stress, tilmicosin－ 16 －