水泳プールの水質及び飲料水検査における大腸菌及び一般細菌の検査方法について＜ 平成１５年度版 ＞

愛知県学校薬剤師会

＜ はじめに ＞「学校環境衛生の基準」の改正及び「愛知県プール条例施行規則等の一部改正」に伴う大腸菌群の測定方法及び一般細菌の検査についてその改正点及び検査方法について考えます。
今回の改正により大腸菌群及び一般細菌検査は以下の方法により毎月１回以上実施することとされました。
＜大腸菌群＞
乳糖ブイヨン-ブリリアントグリーン乳糖胆汁ブイヨン培地（ＬＢ-ＢＧＬＢ）法（※１）、又は特定酵素基質培地（ＭＭＯ-ＭＵＧ）法（※２）により培養を行うが、大腸菌群は、検出されてはならない。
※１ ＬＢ-ＢＧＬＢ法
z 推定試験
検水５０ｍｌを３倍濃厚乳糖ブイヨン培地（ＬＢ）に加え、孵卵器内で３５℃ないし３７℃で４５ないし５１時間培養し、ガスの発生を観察する。この時ガスの発生がなければ大腸菌群陰性である。
z 確定試験
上の推定試験においてガスの発生を観察したときは、直ちに当該発酵管中の菌液１白金耳量をブリリアントグリーン乳糖胆汁ブイヨン培地（ＢＧＬＢ）に移植し、孵卵器内で４５ないし５１時間培養しガスの発生を観察する。このときガスの発生がなければ大腸菌群陰性である。
※２

ＭＭＯ-ＭＵＧ法
ネジ口試験管に（乾燥滅菌済）ＭＭＯ-ＭＵＧ培地を分注し検水５０ｍｌを加え、直ちにネジ口栓を堅く締め、試験管を上下に激しく振って培地を溶かした後、孵卵器内で２４時間培養し、黄変の有無を観察する。このとき、検水の色が比色液より薄いときは大腸菌群陰性です。
検査が短時間で実施できるのが特徴です。
比色液はＯ-ニトロフェノール４ｍｇ、ヘベス 6.9ｇ、ヘベスナトリウム塩 5.3ｇを混合し、精製水を加えて１℃とし、ネジ口試験管に分注して作る。

※３

その他の方法平成１４年５月２２日の事務連絡より、プール及び飲料水水質検査で学校環境衛生の基準の中で大腸菌群検査法にＭＭＯ−ＭＵＧ法が導入されていますが、いかなる特定酵素基質培地法でもよいこととなりました。（詳細は検査方法の項を参照）＜一般細菌数＞
標準寒天培地法により培養を行うが、一般細菌数はプール水にあっては１ｍｌ中２００コロニー以下であること。また、飲料水にあっては１ｍｌ中１００コロニー以下であること。
※検水をメスピペットにより２枚以上のペトリ皿に１ｍｌずつ採り、これにあらかじめ加熱溶解させた４５ないし５０℃に保った標準寒天培地を薬１５ｍｌ加えて混和し、培地が固まるまで静置する。次にペトリ皿を逆さにして孵卵器内で３５℃ないし３７℃で２２ないし２６時間培養する。培養後、各ペトリ皿の集落数を数え、その値を平均して菌数とする。
ここで注目すべきは大腸菌群検査において今まで、水道法・上水試験法等で多少検査方法及び使用できる培地等に差があったのですが、今後、上水試験法で認められたいかなる特定酵素基質培地法を用いて検査を行っても良いこととされました。
また、今までＬＢ−ＢＧＬＢ法で検査されていたところが多かったと思いますが、今回の改正等によってＬＢ−ＢＧＬＢよりＭＭＯ−ＭＵＧ法あるいはその他の特定酵素基質培地法で行う方が比較的検査が早く簡単でやりやすいと考えられます。
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＜ 大 腸 菌 群 ＞※

速やかに検査する。速やかに検査できない場合は１から５℃の冷暗所に保存し１２時間以内に検査すること

１． ＬＢ−ＢＧＬＢ法（乳糖ブイヨン−ブリリアントグリーン乳糖胆汁ブイヨン培地法）【試薬・器具等】
３倍濃厚ＬＢ発酵管 ： 市販のＬＢ培地を用い、使用法の３倍濃度となるように平底フラスコなどにとり加熱溶解する。容量２５ｍｌ及び７５ｍｌの位置に刻線を付けた大試験管（外径約３０ｍｍ）にダーラム管（参考 内径約６ｍｍ×高さ５０ｍｍ）を入れ、加熱溶解した３倍濃厚ＬＢ培地を２５ｍｌの刻線まで入れ、メタルキャップをして、１２１℃１５分間高圧滅菌後、流水などで急冷する。
ＢＧＬＢ発酵管： 市販のＢＧＬＢ培地を用い、使用法に従って平底フラスコなどで加熱溶解し、ダーラム管（参考 内径約６ｍｍ×高さ３０ｍｍ）を入れた中試験管に１０ｍｌずつ分注し、メタルキャップをして、１２１℃１５分間高圧滅菌後、流水などで急冷する。
ＥＭＢ平板培地： 市販のＥＭＢ培地を用い、使用法に従って平底フラスコなどで加熱溶解し、１２１℃１５分間高圧滅菌後、滅菌ペトリ皿に約１５ｍｌずつ分注し、静置して固まらせ、孵卵器に倒置し、蓋をずらして３０分間表面を乾燥する。
（用事調整）
普通寒天培地： 市販の普通寒天培地を用い、使用法に従って平底フラスコなどで加熱溶解し、中試験管に５〜１０ｍｌずつ分注し、メタルキャップをして１２１℃１５分間高圧滅菌し、試験管を斜めに静置して培地を固まらせる。
ＬＢ発酵管： 市販のＬＢ培地を用い、使用法に従って平底フラスコなどで加熱溶解し、ダーラム管（参考 内径６ｍｍ×高さ３０ｍｍ）を入れた中試験管に１０ｍｌずつ分注し、メタルキャップをして、１２１℃１５分間高圧滅菌後、流水などで急冷する。
グラム染色液： 市販品あり【注意・参考事項】① 残留塩素を含まない試料は、栓と首部をアルミ箔で覆い、乾熱滅菌（１７０℃１時間）した共栓ガラス瓶の肩まで採取する。
（市販のガス滅菌したポリ瓶でもよい。）残留塩素を含む試料にあっては、チオ硫酸ナトリウム（Na2S2O3・H2O）の０．０２〜０．０５ｇを入れ、栓と首部をアルミ箔で覆い１２１℃２０分間高圧滅菌した１００〜１２０ｍｌの共栓ガラス瓶の肩まで採取する。
② 検水５０ｍｌを傾斜法で発酵管に入れる。
③ 発酵管を軽く振ったとき、泡状のガスが認められた場合もガス発生と判定する。
④ 菌液１白金耳量をＢＧＬＢ発酵管に移植する。
⑤ ＥＭＢ平板上に独立集落が発生するように、１白金耳量を画線塗布する。（塗り始めは狭い範囲を往復して平板に強くこすりつけ菌液を薄めるようにする。）⑥ 定型的集落（緑色金属光沢を示し、透過光線でさび色を呈する円形集落）及び亜定型的集落の形、色などは上水試験方法のカラー写真を参考にする。
⑦ 集落を白金耳で採り、ＬＢ発酵管と普通寒天斜面培地に移植する。
⑧ ＬＢ発酵管にてガスの発生を観察したときは、同一集落の普通寒天斜面培養菌についてグラム染色を行う。
⑨ グラム染色は Hucker の変法を用いる。常に対照として、同一スライドグラス上にブドウ球菌（グラム陽性）と大腸菌（グラム陰性）を塗末染色し検鏡する。ここに用いるブドウ球菌及び大腸菌は必ず新鮮培養菌を使用する。
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【操作】

検水５０ｍｌ

３倍濃厚ＬＢ発酵管培

養３５〜３７℃

ガス発生

ガス不発生
（大腸菌群

ＢＧＬＢ発酵管培

養３５〜３７℃

ガス発生

定型的集落
１個釣菌

培

４８±３時間（大腸菌群

３５〜３７℃陰性）

２４±２時間亜定型的集落２個以上釣菌普通寒天斜面培地
養陰性）

ガス不発生

ＥＭＢ平板培地
倒置培養

４８±３時間非定型的集落２個以上釣菌ＬＢ発酵管（１本）（２本以上）
３５〜３７℃
４８±３時間

グラム染色

培

養

ガス発生（１本）（２本以上）
３５〜３７℃
４８±３時間
ガス不発生
（大腸菌群

検鏡

（×１０００）グラム陰性、無芽胞の桿菌であれば大腸菌群陽性とする。

【成績書記載】陰性、陽性のいずれかを○で囲む。

【水質基準】

検出されないこと。

3陰性）

※Ｈｕｃｋｅｒの変法【操作】
スライドグラス

滅菌精製水１滴
微量の菌（白金線で微量の菌をとって混ぜ拡げ薄層とする）
乾

燥

自然乾燥

固定

弱い火炎中を３回連続通過

染色Ｈｕｃｋｅｒの液を滴加１分静置

水洗（スライドグラス裏面から弱い流水）ろ紙で水切り
ルゴール液滴加
水洗、水切り、風乾エタノール中で約３０秒脱色、ろ紙でアルコール分を吸収
サフラニン液滴加

１分間静置

水洗、乾燥
検鏡

淡紅色を呈する（グラム陰性）無芽胞の桿菌であれば大腸菌群陽性とする。

（×１０００）【試薬等】
Hucker の液： Ａ液

クリスタルバイオレット０．３ｇを９５％エタノール２０ｍｌに溶解させたもの。
Ｂ液 シュウ酸アンモニウム０．８ｇを精製水８０ｍｌに溶解させたもの。
Ａ液とＢ液を混合、翌日ろ過し染色ビンに貯える。
ルゴール液 ： ヨウ素１ｇ及びヨウ化カリウム２ｇを精製水３００ｍｌに溶解させたもの。
サフラニン液： サフラニン約２．３ｇを純エタノール１００ｍｌに溶解させ、使用時これを精製水で５〜１０倍に希釈した液。

【注意・参考事項】
１）Ａ液を精製水で１０倍に希釈し、その２０ｍｌとＢ液８０ｍｌとを混合した液を用いてもよい。

4２． ＭＭＯ−ＭＵＧ法（特定酵素基質培地法）【試薬等】
大腸菌群検査用試薬
ピペット、ネジ口試験管
恒温器
比色管
紫外線ランプ：：：：：

市販品あり（参考 コリラート）
滅菌済みのもの。（５０ｍｌの遠心管でも可）
３５℃〜３７℃で制御できるもの
市販品あり。（コリラート比色管等）
長波長（３６０ｎｍ）紫外線照射ランプ【注意・参考事項】① 水中の大腸菌群の検出並びに大腸菌の同定を行うことができる。
② 操作はすべて無菌的に行う。
③ 試薬の組成（コリラート５０Ｐ／Ａの場合）は、特異的に大腸菌群に利用される塩類、窒素源及び炭素源からなり、大腸菌群並びに大腸菌のそれぞれに特異的な酵素基質としてＯＮＰＧ（ o-Nitrophenyl- β -D-Galactopyranoside ） 及 び Ｍ Ｕ Ｇ （ 4-Methylumbelliferyl- β-D-Glucuronide）を含んでいる。ＯＮＰＧが代謝され黄色の色素が遊離した場合、大腸菌群の存在を示し、ＭＵＧが代謝され蛍光色素が遊離した場合は大腸菌の存在を示す。
④ 容器を激しく振り、転倒混和を繰り返し、試薬を溶解させる。ごく少量の溶け残りがあっても培養中に溶解される。
⑤ 腐食土由来などの物質が含まれている検水では最初から色が付いている場合があるが、この場合は反応後同一試料をコントロールブランクとして比較する。
⑥ 試験管から約１３ｃｍ離して暗所で紫外線照射を行う。ポータブル型の紫外線ランプ（長波長３６０ｎｍ）を使用する場合は、約５ｃｍの距離から照射する。
⑦ 大腸菌の１００ｍｌあたりの菌数を算出するためには、この方法とは別に菌数測定用検査を行う。

左はポリプロピレン製の滅菌遠心管（５０ｍｌ）とコリラート５０Ｐ／Ａ
検水５０ｍｌとコリラートを入れ激しく混和する。
左下は遠沈管立てにたてたところ、この状態で右下孵卵器にいれ３５〜３７℃で２４時間培養する

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【操作】
検水５０ｍｌ

ねじ口試験管
大腸菌群検査用試薬
１パック（コリラート ５０Ｐ／Ａ）
激しく振り混ぜる培

養３５〜３７℃

２４時間

比色管と比較

変化なし

比色管と同等又はそれ以上の黄色発色

紫外線照射

紫外線ランプ比色管と比較

大腸菌群陰性

蛍光なし

比色管と同等またはそれ以上の蛍光

大腸菌群陽性
大腸菌陰性

大腸菌群陽性大腸菌陽性【成績書記載】陰性、陽性いずれかを○で囲む。
【水質基準】
検出されないこと。

＜陽性と判定する黄色濃度の下限を示す比色液＞

6＜大腸菌陽性の場合の例＞

３． その他の方法
平成１４年５月２２日の事務連絡より、プール及び飲料水水質検査で学校環境衛生の基準の中で大腸菌群検査法にＭＭＯ−ＭＵＧ法が導入されていますが以下に示すようないかなる特定酵素基質培地法
でもよいこととなりました。
【上水試験法（614〜617Ｐ参照）】＜特定基質培地法＞
本法は、大腸菌群の乳糖発酵性に関与する βーガラクトシターゼの有無で大腸菌群を判定する方法である。βーガラクトシターゼ活性を調べる酵素基質には、ＯＮＰＧ（ｏ−ニトロフェニルーβーＤ−ガラクトピラノシド）及びＸＧａｌ（５−ブロモー４−クロロー３−インドリルーβーＤ−ガラクトピラノシド）があり、それぞれガラクトピラノシドの分解により遊離した発色物質で判定する。用いる酵素基質によりＯＮＰＧ法、ＸＧaｌ法に分かれる。なお、両方とも大腸菌が同時に判定できるよう MUG（４−メチルウンべりフェニルーβーD-グルクニド）が含まれている。
Ａ．ONPG 法
酵素基質として培地に含まれている ONPG が大腸菌群によって分解され、黄色を呈する o−ニトロフェノールを遊離する反応を利用した方法である。
ONPG 法に用いる培地は、MMO（最小培地 ONPG）−MUG 培地と IPTG 添加 ONPG−MUG 培地がある。
（１）MMO-MUG 培地（２）IPTG 添加 ONPG−MUG 培地
Ｂ．ＸＧａｌ法
酵素基質として培地に含まれている XGaｌが大腸菌群によって、分解され、５−ブロモー４−クロロー３−インドリルを遊離し、これが酸素と結合して青色を呈するインヂゴとなる反応を利用した方法である。
（１）XGａｌ−ＭＵＧ培地（２）ピルビン酸添加ＸＧａｌ−ＭＵＧ培地
なお、試薬、器具、操作方法は省略してあります。

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＜ 一 般 細 菌 ＞※【操速やかに検査する。速やかに検査できない場合は１から５℃の冷暗所に保存し１２時間以内に検査すること作】

検水

よく振り混ぜる
ペトリ皿

検水１ｍｌずつ２枚の滅菌ペトリ皿に入れる。

標準寒天培地を約１５ｍｌずつ加える。

混合

直ちに十分混合静置

培地が固まるまで

倒置培養

３５〜３７℃

２４±２時間

集落数の計測ペトリ皿２枚の集落数を平均して菌数とする。

菌数０
菌数 ９９以下
菌数１００以上

０
小数点以下は切り捨て
四捨五入し、上位より２桁を有効数とする（例：１４２は１４０）
３００以上【成績書記載】菌数３００以上【水質基準】

１ｍｌの検水で形成される集落数が１００以下であること。
ただし、水泳プールにおいては１ｍｌ中集落数は２００以下であること。
【試薬等】
標準寒天培地 ： 市販の標準寒天培地を用い、使用法に従って平底フラスコなどで加熱溶解し、１２１℃ １５分間高圧滅菌する。５０℃前後に保っておくこと。
（市販品によっては１２１℃ ２０分高圧滅菌もあるので確認すること）
なお、培地は変質の恐れがあるので、加熱溶解を繰り返して用いないこと
滅菌シャーレ ： 深型、１検体につき２枚。
（ペトリ皿）
メスピペット ： ２ｍｌ用を用意し乾熱滅菌しておく。

8【注意・参考事項】① 残留塩素を含まない試料は、栓と首部をアルミ箔で覆い、乾熱滅菌（１７０℃１時間）した共栓ガラス瓶の肩まで採取する。
（市販のガス滅菌したポリ瓶でもよい。）残留塩素を含む試料にあっては、チオ硫酸ナトリウム（Na2S2O3・H2O）の０．０２〜０．０５ｇを入れ、栓と首部をアルミ箔で覆い１２１℃２０分間高圧滅菌した１００〜１２０ｍｌの共栓ガラス瓶の肩まで採取する。
② 乾熱滅菌した２ｍｌのメスピペットを用いて検水を採り、２枚の滅菌ペトリ皿（蓋に試料名をつける）にそれぞれペトリ皿の蓋をわずかに開けて１ｍｌずつ入れる。
③ 標準寒天培地を約１５ｍｌずつ加えた後、ペトリ皿の蓋に付着しないように注意してよく混合する。
（落下細菌等の混入にも注意！）
対照として滅菌ペトリ皿に培地のみを注加、培養してペトリ皿・培地の無菌及び操作が完全か否かを確認する。
④ ペトリ皿は蓋についた凝固水が平板上に落ちないように逆さにして培養する。
⑤ 培養後集落数を数え、その値を平均して菌数とする。
５倍率のルーペを用いると便利である。

＜乾熱滅菌器とホットスターラー＞＜ウオーターバス＞＜２４時間培養後の集落＞＜ 操作手順の図解 ＞
9＜高圧蒸気滅菌器＞

※

注 意！！
最初の準備段階として標準寒天培地を精製水で溶かして高圧蒸気滅菌器にかける。（かなり時間がかかるので最初に準備すること）
その後、４５〜５０℃程度までさますとともに、ウオーターバスで４５〜５０℃で保温し培地が固まらないようにしておく。
準備が終わったら以下の操作手順をふみ倒置培養する。
★倒置培養の意味？？
落下細菌の影響を防ぐ意味と、培地が固まるときシャーレの蓋の内側に蒸気が付着し冷める過程
で水滴となり、そのままで放置すると培地表面に落ち培養した集落が重なり１つの巨大コロニーを形成してしまうことを防ぐ意味があります。

①

ペトリ皿を２枚取り出す

②

消毒

③

ピペットで検水をとる④

１ｍｌずつ入れる

⑤

消毒

⑥

寒天培地

⑦

口をバーナーであぶる

⑧⑦と同

⑨

約１５ｍｌほど入れる⑩ 十分混合する。口をバーナーであぶる⑪

蓋（アルミ箔）をする⑫⑦と同※培養後コロニーの数を数える。
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＜ 参 考 資 料 ＞★プール水の水質検査
ろ過器
プール水

検査項目
遊離残留塩素濃度

循環水

浄化後の水素イオン濃度
濁度
過マンガン酸カリ
ウム消費量
大腸菌群
一般細菌
濁度

検査回数
１日午前１回以上
午後２回以上
１日１回以上１（比較的残留塩素が高濃度）

月１回以上

２
年１回以上

プール水

（比較的残留塩素が低濃度）
総トリハロメタン３

年１回以上※ 遊離残留塩素濃度の測定は、プール全体の濃度が把握できる３地点（水面下２０ｃｍ）に、プールの形状に応じて適切な地点を加える。
※ 毎月の水質検査の採水地点はおおむね②の水面下２０ｃｍとする。

★ プール水の水質検査方法
項目
遊離残留塩素濃度

方法度
注１）
注２）

水道法水質基準（※）に定める検査方法
又は、上水試験方法

過マンガン酸カリウム消費量
一般細菌
大腸菌群

詳

細ＤＰＤ法
又は、これと同等以上の精度を有する方法

水素イオン濃度
濁給水管

水道法水質基準（※）に定める検査方法

ガラス電極法又は比色法
比濁法、透過光測定法
積分球式光電光度法、散乱光測定法又は透過散乱法
滴定法
標準寒天培地法

ＬＢ−ＢＧＬＢ法
ＭＭＯ−ＭＵＧ法
総トリハロメタン水道法水質基準（※）に定める検査方法
ＰＴ−ＧＣ−ＭＳ法
ＨＳ−ＧＣ−ＭＳ法
ＰＴ−ＧＣ法※ 水道法（昭和３２年法律第１７７号）第４条第２項の規定に基づく水質基準に関する省令（平成４年厚生省令第６９号）
注１） 濁度でプール水の濁度は０．５度以下が確認できる方法で行う。
注２） 濁度でろ過器出口からの水の濁度は０．１度以下が確認できる方法で行う。
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水泳プールの水質及び飲料水検査における大腸菌及び一般細菌の検査方法について
平成１５年

５月１７日

愛知県学校薬剤師会

情報委員会（担当12木全勝彦）