ChIP Reagents～クロマチン免疫沈降（ChIP）法用 ストック溶液セット～マニュアル（第 2 版）

Code No. 318-07131

NIPPON GENE CO., LTD.

ChIP Reagents Manual (ver. 2)
09D22-1804

目 次Ⅰ

製品説明

1

Ⅱセット内容

1

Ⅲ

保存

2

Ⅳ使用上の注意

2

Ⅴ

使用例

2

Ⅵ

＜本品以外に必要な試薬、機器など＞

21) 磁気ビーズと一次抗体の反応32)-1細胞の調製（接着細胞の場合）

42)-2細胞の調製（浮遊細胞の場合）

53) クロマチンの調製

64) 一次抗体とクロマチンサンプルの反応と洗浄

75)8DNA 抽出参考資料

9

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Ⅰ 製品説明ChIP Reagents は、クロマチン免疫沈降（ChIP：chromatin immunoprecipitation）法のうち、化学架橋（クロスリンク）してからクロマチン断片を調製するクロスリンク（X-ChIP：
cross-linked ChIP）法で使用するストック溶液のセットです。
本品 1 セットには、クロマチン免疫沈降を 30 回実施するための試薬が含まれております。
ただし、2 M Glycine は、対象とする細胞によって使用回数が異なります。

Ⅱ セット内容（容量）

（組成）

1.

2 M Glycine

30 ml×1本

2 M Glycine

2.

NP-40 buffer

250 ml×2本

10 mM Tris-HCl (pH 8.0)
10 mM NaCl
0.5% NP-40

3.

SDS Lysis buffer

10 ml×1本

50 mM Tris-HCl (pH 8.0)
1% SDS
10 mM EDTA

50 ml×1本

50 mM Tris-HCl (pH 8.0)
167 mM NaCl
1.1% Triton X-100
0.11% Sodium deoxycholate

160 ml×1本

150 mM NaCl
50 mM Tris-HCl (pH 8.0)
1 mM EDTA (pH 8.0)
0.1% SDS
1% Triton X-100
0.1% Sodium deoxycholate

50 ml×1本

500 mM NaCl
50 mM Tris-HCl (pH 8.0)
1 mM EDTA (pH 8.0)
0.1% SDS
1% Triton X-100
0.1% Sodium deoxycholate

50 ml×1本

10 mM Tris-HCl (pH 8.0)
300 mM NaCl
5 mM EDTA (pH 8.0)
0.5% SDS（＊1）

4.

ChIP dilution buffer
（＊2）

5.

1×RIPA buffer -150 mM
（＊2）

6.

1×RIPA buffer - 500 mM
（＊2）

7.

ChIP direct elution buffer
（＊1）

8.

マニュアル

1部

SDS Lysis bufferおよびChIP direct elution buffer中に白い結晶が析出する場合がありますが、品質、性能に問題はありません。このような場合には、容器ごと37～65℃でインキュベートし、結晶を完全に溶解させてからご使用ください。

（＊1）（＊2） 使用時は氷冷し、使用直前にプロテアーゼ阻害剤を加えてください。なお、プロテアーゼ阻害剤は本品に含まれておりません（p. 2 参照）ので、添加量等については、使用するプロテアーゼ阻害剤の使用方法に従ってください。

-1-

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Ⅲ 保存
ChIP Reagents に含まれる試薬はすべて室温保存が可能です。

Ⅳ 使用上の注意
・

本品は試験研究用試薬ですので、医薬品、その他の目的にはご使用になれません。

・

試薬についての基本的な知識のある方以外は取り扱わないでください。

Ⅴ 使用例
1) 磁気ビーズと一次抗体の反応

P.3

2)-1

細胞の調製（接着細胞の場合）

P.42)-2細胞の調製（浮遊細胞の場合）

P.53) クロマチンの調製

P.64) 一次抗体とクロマチンサンプルの反応と洗浄

P.75)

P.8

DNA 抽出この使用例についての詳細は、「Ⅵ参考資料」にあるエピジェネティクス実験プロトコールをご参照ください。また、用いる対象に応じて適切な反応条件を検討する必要があります。

＜ChIP Reagents以外に必要な試薬、機器など＞□ 培地

DMEM（ロンザ/12-708Fなど）□ PBS (phosphate-buffered saline)（10×PBS Buffer、 ニッポンジーン/314-90185）□ 16% パラホルムアルデヒド（富士フイルム和光純薬/043368）□ 蒸留滅菌水（Distilled Water、ニッポンジーン/318-90105）□ プロテアーゼ阻害剤カクテル [Complete mini, EDTA-free(ロシュ・ダイアグノスティッ
クス/1 836 170)、プロテアーゼ阻害剤ミックス(富士フイルム和光純薬/160-19501)など]□ 0.5 mg/ml RNase A, DNase-free（ロシュ・ダイアグノスティックス/1 119 915など）□ 20 mg/ml プロティナーゼK溶液（富士フイルム和光純薬/162-22751）□ フェノール/クロロホルム/イソアミルアルコール（PCI、ニッポンジーン/311-90151）□ クロロホルム（富士フイルム和光純薬/038-02606）□ 3 M 酢酸ナトリウム（pH 5.2）（ニッポンジーン/316-90081）□ 100%および70%エタノール□ アルコール沈殿用共沈剤（Ethachinmate、ニッポンジーン/312-01791）□ TE [10 mM Tris-HCl（pH 8.0）, 1 mM EDTA] （ニッポンジーン/314-90021）-2-

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□ 10%または20% SDS（10% SDS Solution、ニッポンジーン/311-90271）□ 目的のタンパク質を認識する抗体（抗ヒストン修飾抗体など）□ コントロールIgG
・ウサギポリクローナル抗体用：ChromPure Rabbit IgG. whole molecule（ジャクソンイムノリサーチ/011-000-003）
・マウスモノクローナルIgG用：ChromPure Mouse IgG. whole molecule（ジャクソンイムノリサーチ/015-000-003）□ 磁気ビーズ
・ウサギポリクローナル抗体用：Dynabeads® Protein G（インビトロジェン/100-03D,-04D）
・マウスモノクローナルIgG用：Dynabeads® M-280 Sheep anti-Mouse IgG（インビトロジェン/112-01D, -02D）□ 超音波破砕機 [ブランソン社 Sonifier® 250（マイクロチップ）など]
1.5 ml Protein LoBindチューブ（エッペンドルフ/95292）□ 低吸着チューブ□ 磁気スタンド1)

Dynal MPCTM-S（インビトロジェン/120-20D）

磁気ビーズと一次抗体の反応

Dynabeads® けん濁液
1.5 ml チューブに Dynabeads®を必要量取り分ける

磁気スタンドに置き、1 分間静置
上清を除く
1 ml

PBS で洗浄（3 回繰り返す）

500 μlRIPA buffer-150 mM で洗浄

500 μlRIPA buffer-150 mM の添加一次抗体（0.5～5 μg）の添加
4℃で 4 時間～一晩、ローテーターで混和しながらインキュベート一次抗体を付加した磁気ビーズ-3-

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2)-1細胞の調製（接着細胞の場合）

10 cm ディッシュで培養した細胞（4～5×106 cells）培地を除く
10 ml

1% ホルムアルデヒド入りの DMEM をすばやく添加

室温で 5～10 分間インキュベート*＊クロスリンクのインキュベート時間は標的タンパク質により異なるため、条件検討する。

ホルムアルデヒド入りの DMEM を除く
10 ml

200 mM Glycine 入りの DMEM を添加

室温で 5 分間インキュベート
Glycine 入りの DMEM を除く
PBS で軽く洗浄
10 ml

NP-40 buffer の添加

10 分間ゆっくり振盪（省略可能）
NP-40 buffer を除く
1 ml

NP-40 buffer の添加

スクレーパーで細胞をはがし、1.5 ml チューブへ入れる

遠心（1,000 ×g、3 分間、4℃）
沈殿（細胞）＜「 3) クロマチンの調製」につづく＞-4ChIP Reagents Manual (ver. 2)
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2)-2細胞の調製（浮遊細胞の場合）

浮遊細胞（1～5×105 cells/ml ; 10～20 ml 程度）
16% ホルムアルデヒドを終濃度 1％になるよう培地に直接添加する
室温で 5～10 分間インキュベート*＊クロスリンクのインキュベート時間は標的タンパク質により異なるため、条件検討する。

2 M Glycine を終濃度 350 mM になるよう添加
室温で 5 分間インキュベート
遠心（400 × g、3 分間、室温）
沈澱（細胞）
PBS で軽く洗浄
遠心（400 ×g、3 分間、室温）
沈澱（細胞）
10 ml

NP-40 buffer で洗浄遠心（1000 × g、3 分間、室温）
沈澱（細胞）
1 ml

NP-40 buffer の添加

1.5 ml チューブへ入れる

遠心（1000 ×g、3 分間、室温）
沈殿（細胞）＜「 3) クロマチンの調製」につづく＞-5ChIP Reagents Manual (ver. 2)
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3)クロマチンの調製

沈殿（細胞）
チューブを氷上に置き、冷やす＊＊これ以降の操作は、氷上で行う。

100 μlSDS Lysis buffer の添加

ピペットマンで、10 回程度懸濁400 μlChIP dilution buffer を加え混合超音波破砕を行う*＊予備実験により適切な条件を検討する（200～1,000 bp 程度の断片化クロマチンにする）。

遠心（20,000 ×g、10 分間、4℃）
上清（断片化クロマチン）
上清を新しい 1.5 ml チューブへ移す

500 μlChIP dilution buffer を加え、計 1 ml にする

適量ずつ分注する（ → 分注したクロマチン溶液の一部を input として 4℃に保存）
クロマチン溶液*＊ヒストン修飾抗体を用いた場合、4～5×106 cells 分のクロマチンから 3 反応の ChIP 実験を行うことができる（ChIP dilution buffer を加え計 1 ml にしたクロマチン溶液から 300 μl ず
つ分注し、30 μl を input とする）。

1×RIPA buffer-150 mM を加え、1 チューブあたり 500 μl にする
クロマチンサンプル-6-

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4)

一次抗体とクロマチンサンプルの反応と洗浄

一次抗体を付加した磁気ビーズ
1) で調製したビーズを磁気スタンドで回収し、上清を除く

500 μl 1×RIPA buffer-150 mM（氷冷）で 2 回洗浄
3) で調製したクロマチンサンプルの添加
4℃で一晩、ローテーターで混和しながらインキュベートビーズを磁気スタンドで回収し、上清を除く
1 ml

1×RIPA buffer-150 mM（氷冷）で 2 回洗浄

1 ml

1×RIPA buffer-500 mM（氷冷）で洗浄

1 ml

TE（氷冷）で洗浄

200 μlChIP direct elution buffer の添加

ここから、保存していた 3) の input も同時に行う*＊Input にも 200 μl になるように ChIP direct elution buffer を加え、さらに SDS を最終濃度が 0.5%になるように加える。

65℃で 8 時間以上、インキュベート
2 μl 500 μg/ml RNase A の添加
37℃で 30 分間、インキュベート
5 μl 20 mg/ml プロティナーゼ K の添加
55℃で 1～3 時間、インキュベート＜「 5) DNA 抽出」のステップにつづく＞-7-

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5)

DNA 抽出＜「 4) 一次抗体とクロマチンサンプルの反応と洗浄」からのつづき＞
等量の フェノール/クロロホルム/イソアミルアルコールを加え、混和
遠心（MAX、5 分間、室温）
水層

水層分取後のフェノール/クロロホルム層
100 μl の TE を加え、混和水層を新しいチューブへ移す

遠心（MAX、5 分間、室温）水層をチューブに加える等量（300 μl 程度）のクロロホルムを加え、混和遠心（MAX、5 分間、室温）
水層
水層を新しいチューブに移す

0.1 倍量の 3 M 酢酸ナトリウム（pH 5.2）
エタノール沈殿用共沈剤を加え、混和2.5 倍量のエタノール
遠心（MAX、5 分間、4℃）
沈殿
70%エタノールで洗浄し、風乾
40 μl の TE に溶かす

DNA 溶液*＊4℃（～3 日間程度まで）または－80℃（数週間）で保存し、できるだけ早めに評価する。

定量 PCR または PCR により解析する。0.4～2 μl 程度を 1 つの反応に用いる-8-

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Ⅵ 参考資料
１． 実験医学別冊 注目のバイオ実験シリーズ「エピジェネティクス実験プロトコール」（羊土社、2008年10月発行） 第二章、p. 143-166：「クロマチン免疫沈降（ChIP）法」（林陽子、後藤友二、木村宏）-9-

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株式会社ニッポンジーン
TEL (076) 451-6548

FAX (076) 451-6547

URL http：//www.nippongene.com/siyaku/

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