ORIENTAÇÃO H
MANEJO INTEGRADO DE PRAGAS (MIP)Versão 1© 2020 Rainforest Alliance. Todos os direitos reservados.

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Código do Documento: Versão:Orientação H: Manejo Integrado de Pragas (MIP)

SA-G-SD-9-V1

1

Data da primeira publicação: Data de revisão:Válido de:Vence em:

31 de dezembro de 2020

31 de dezembro de 2020

Até aviso posterior

ND

Desenvolvido por:

Aprovado por:

Departamento de Normas e Asseguramento da
Rainforest AllianceDiretora de Normas e Asseguramento

Relacionado a:
SA-S-SD-1-V1 Norma de Agricultura Sustentável Rainforest Alliance 2020, Requisitos de Produção
Agrícola
SA-GL-SD-V1.1 Anexo 1: Glossário
SA-S-SD-8-V1.1 Anexo 7: Gestão de Pesticidas
RA-P-SP-7-V2.4. Política de Uso Excepcional para pesticidas altamente perigosos
pela FAO/OMS.

Substitui:
ND

Aplicável a:
Detentores de Certificado de Produção Agrícola
País/Região:Todos

Cultivo:

Tipo de Certificação:Todos os cultivos no escopo do sistema de certificação Certificação de Produção Agrícola.
Rainforest Alliance, veja as Regras de Certificação.

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SUMÁRIO
Objetivo........................................................................................................................................................ 4
Escopo .......................................................................................................................................................... 4
Público Alvo ................................................................................................................................................ 4
Definições vinculantes relacionadas ao Manejo Integrado de Pragas do Glossário ................. 4
Introdução ................................................................................................................................................... 5
Requisitos da norma para IPM ................................................................................................................ 7
Implementação dos Requisitos ............................................................................................................... 7
Requisito Básico 4.5.1 ............................................................................................................................. 7
Exemplos de perguntas para elaboração de uma boa Estratégia de MIP. ................................. 9
Requisito Básico 4.5.2 ........................................................................................................................... 10
Requisito Básico 4.5.3 ........................................................................................................................... 13
Requisito Básico 4.5.4 ........................................................................................................................... 18
Melhoria Mandatória 4.5.5 (N1) ........................................................................................................ 18
Melhoria Mandatória 4.5.6 (N2) ........................................................................................................ 20
Orientações gerais ............................................................................................................................... 20
Medidor Mandatório 4.5.7 .................................................................................................................. 21
Manejo Integrado do Mato ................................................................................................................... 22
Orientações específicas para café ..................................................................................................... 23
Pragas Comuns no Café .................................................................................................................... 26
Pragas Comuns no Café .................................................................................................................... 37
Mais informações ................................................................................................................................. 44
Orientações específicas para Chá ...................................................................................................... 45
Pragas Comuns no Chá ...................................................................................................................... 47
Doenças Comuns no Chá .................................................................................................................. 56
Informações adicionais sobre doenças radiculares ..................................................................... 62
Orientações específicas para Cacau ................................................................................................. 63
Pragas Comuns no Cacau ................................................................................................................. 65
Doenças Comuns no Cacau ............................................................................................................. 77
Orientações específicas para Banana ............................................................................................... 86
Pragas Comuns na Banana ............................................................................................................... 88
Doenças comuns na Banana .......................................................................................................... 104
Inimigos naturais da banana (Musa AAA) pragas e doenças ................................................. 115
Recursos de MIP ..................................................................................................................................... 128
Modelo do tipo de informações mínimas a serem registradas para a estratégia de MIP ..... 128
Exemplos de inimigos naturais ............................................................................................................. 129

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OBJETIVO
Essa orientação visa fornecer informações sobre Manejo Integrado de Pragas para auxiliar
os produtores a entenderem e implementarem os requisitos da norma para uma agriculturade sucesso e sustentável.

ESCOPO
Essa orientação foca na seção 4.5 MANEJO INTEGRADO DE PRAGAS (MIP) da norma. Ela
considera de forma particular a maioria dos processos que afetam a ocorrência de pragas
e os diferentes métodos de controle para seu manejo em um sistema de agricultura
sustentável. Nessa orientação o termo PRAGA se refere a artrópodes, roedores, doenças eervas daninha. Algumas vezes as intervenções são específicas para alguns tipos de pragas.

PÚBLICO ALVO
Essa orientação deve servir ao pessoal técnico que esteja preparando grupos de produtores(ou donos de plantações) para certificação, para auxiliá-los a entenderem a importância
dos requisitos da norma e como ela pode ser mais bem implementada em suas
circunstâncias específicas. O documento deve ser também uma orientação para inspetoresinternos/auditores para verificarem a conformidade com os requisitos, a serem maiscapazes de avaliar uma situação encontrada no campo, bem como o quão adequadas
são as práticas de manejo adotadas pelos produtores em um dado meio ambiente
agroecológico.

DEFINIÇÕES VINCULANTES RELACIONADAS AO MANEJOINTEGRADO DE PRAGAS DO GLOSSÁRIO
Ingredientes Ativos: Um pesticida consiste em diversas substâncias. O ingrediente ativo é oquímico que pode matar, repelir, atrair, mitigar ou de outra forma controlar uma praga.
Outras substâncias podem auxiliar direta ou indiretamente nesse efeito.
Agroquímicos: Compostos químicos comercialmente produzidos, geralmente sintéticos,
usados na produção agrícola, tais como fertilizantes, pesticidas, reguladores decrescimento, nematicidas e condicionadores de solo.
Manejo Integrado de Pragas ou MIP: A consideração criteriosa de todas as técnicas
disponíveis para controle de pragas e a subsequente integração de medidas apropriadas
que desencorajam o desenvolvimento de populações de pragas, bem como amanutenção de pesticidas e outras intervenções em níveis que são economicamente
justificáveis e reduzem ou minimizam riscos para a saúde humana e do meio ambiente. O
MIP enfatiza o crescimento de cultivos e gado saudáveis com a menor perturbação possível
aos agrossistemas e encoraja mecanismos naturais de controle de pragas. A aplicação depesticidas é feita baseada no monitoramento de infestações de pragas ou doenças.
Inimigos naturais: Organismos que matam, reduzem o potencial reprodutivo, ou de outra
forma reduzem o número de outro organismo. Inimigos naturais na produção agrícola sãocomponentes chave nos programas de manejo integrado de pragas. Importantes inimigos
naturais de insetos ou ácaros considerados como pragas incluem predadores, parasitas epatógenos.
Praga: Qualquer espécie, linhagem ou biotipo de planta (erva daninha), animal (porexemplo, nematoide, inseto, artrópode, roedor), ou agente patogênico (microrganismos
como fungos, bactérias e vírus) prejudiciais às plantas ou produtos vegetais.

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Pesticida: Qualquer substância, ou mistura de substâncias de ingredientes químicos ou
biológicos, com a intenção de repelir, destruir ou controlar qualquer praga, e incluindo
espécies de plantas e animais indesejáveis que causam danos ou de outra forma interferem
na produção, processamento, armazenagem, transporte ou comercialização de alimentos
e commodities agrícolas.
O termo inclui substâncias com uso indicado como desfolhante, dissecante ou agente paraafinar frutos ou prevenir sua queda precoce. Pesticidas também são utilizados para
aplicação em cultivos seja antes ou após a colheita para proteger a commodity dadeterioração durante a armazenagem e transporte.
Níveis de tolerância: O nível máximo de dano (ou sintomas de dano) de uma praga ou
doença ocorrendo em uma planta ou população vegetal, que pode ser aceito antes que
medidas particulares devam ser tomadas para controlar a praga ou doença. Se o danoaumentar, as perdas econômicas serão superiores aos custos do controle.

INTRODUÇÃO
Nessa orientação, os requisitos da norma são apresentados juntamente com quaisquer
indicadores relevantes e explicados em detalhe. Os termos sublinhados nos requisitos estão
definidos no glossário. Os termos que são especificamente relacionados o MIP são
apresentados no Capítulo A deste documento; é importante consultar o glossário a medida
que você implementa os requisitos da norma.
Essa orientação para MIP não visa cobrir todas as pragas possíveis nos cultivos. A intenção é
prevenir as pragas mais comuns que afetam os principais cultivos certificados pela
Rainforest Alliance em diferentes regiões ao redor do mundo.
O que é o Manejo Integrado de Pragas?
O uso indiscriminado dos pesticidas na agricultura é associado com efeitos negativos nomeio ambiente e na saúde humana, bem como a perda de biodiversidade,particularmente no Sul global.
A chegada dos pesticidas sintéticos possibilitou a produção de grandes quantidades dealimento, mas também levou à simplificação de ecossistemas, tornando-os menos resilientes
e mais dependentes de insumos externos como pesticidas e fertilizantes sintéticos. A
redução do uso de pesticidas na agricultura é urgente, não apenas para evitar os efeitos
nos humanos e no meio ambiente, mas também para evitar problemas de resistência depragas e a criação de novas pragas.
Os pesticidas são aplicados, com frequência, por força de hábito ou em situações deincerteza, com ou sem a ocorrência de pragas e independente da sua real necessidade.
Isso pode ser um ciclo vicioso de um sistema desequilibrado levando ao longo do tempo àresistência e ressurgimento de pragas, e infestações de pragas secundárias. Isso, por suavez, pode levar à necessidade de utilizar métodos ainda mais agressivos para manejar os
problemas.

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Figura 1. Tiras em florada para melhorar o controle natural das pragas. Fotos: Jack Kelly Clark e Rachael Long. Fonteda foto: Programa de MIP da UC Statewide Regents, Universidade da Califórnia.

A implementação de programas de Manejo Integrado de Pragas (MIP) é crucial para
efetivamente reduzir o uso de pesticidas. A boa implementação do MIP é um investimento
no futuro da agricultura sustentável.
Um programa sólido de MIP demanda uma mudança na mentalidade das práticas
agronômicas e na melhoria contínua do sistema agrícola, que para alguns cultivos significa
a mudança gradual e para outros uma mudança mais sistêmica para manejar pragas edoenças ou o agroecossistema como um todo.
O que acontece se os pesticidas são aplicados como primeira opção para controlar
pragas, doenças e ervas daninhas?
Se os pesticidas são utilizados como primeira opção para controlar as pragas, ou como
medida preventiva, seus inimigos naturais também serão mortos levando a problemas ainda
maiores como resistência de pragas. Também pode levar a um aumento de novas pragas
uma vez que outros inimigos naturais foram mortos. No entanto, a raiz do problema ainda
está lá pois os fatores nas fazendas que possibilitam que essas pragas apareçam aindaestão presentes. Elas incluem fatores tais como solo não saudável, cultivos que não são
propriamente cuidados ou que estejam susceptíveis às pragas e doenças, clima que seja
propício para a praga, ou se não há biodiversidade suficiente na fazenda.
A intervenção correta seria a prevenção do aparecimento da praga na fazenda .
Quais são as vantagens de utilizar o MIP?
• A biodiversidade é conservada e o risco de contaminação humana e ambiental é
reduzido. A conservação da biodiversidade é crucial para prevenir problemas depragas.
• Perdas de cultivo e custos de manejo de praga são reduzidos, pois as medidas decontrole de pragas e o uso de insumos são otimizados.
• O uso desnecessário de pesticidas é evitado.
• O desenvolvimento da resistência de pragas aos pesticidas é reduzido.
• A produção do cultivo é mais estável ao longo do tempo e a produtividade éaumentada.

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REQUISITOS DA NORMA PARA IPM
Visão geralNa seção de Manejo Integrado de Pragas da norma (4.5), há quatro requisitos básicos, dois
requisitos de melhoria mandatória e um requisito medidor 1.

IMPLEMENTAÇÃO DOS REQUISITOSREQUISITO BÁSICO 4.5.1
A gerência implementa a estratégia de MIP conforme elaborada por um profissional
competente. A estratégia de MIP inclui medidas de prevenção, monitoramento eintervenção para o escopo de toda a fazenda, incluindo instalações de processamento. A
estratégia é baseada em condições de clima, resultados do monitoramento de pragas,
ações de MIP implementadas e registros de aplicação de pesticidas. A estratégia de MIP é
atualizada anualmente.

Objetivo
Estabelecer uma estratégia de MIP que reduza as perdas de produtividade por pragas,
reduza ou otimize o uso de pesticidas e aumente a lucratividade.

Aplicabilidade
Esse requisito básico é aplicável à gerência do grupo e fazendas grandes dentro decertificação em grupo, e para fazendas individualmente certificadas. A gerência do grupo
é responsável por elaborar a Estratégia de MIP para seus membros, e por apoiá-los em sua
implementação. A implementação da Estratégia de MIP (elaborada pela gerência do
grupo) por pequenos produtores é requerida em 4.5.5 N1.

Como implementar

Uma estratégia de MIP não é uma
Para implementar o Manejo Integrado deestratégia de erradicação, mas
Pragas em nível de fazenda é é importanteuma estratégia para manejar as
desenvolver uma estratégia de MIP. Uma
populações das pragas em longo
estratégia de MIP é desenvolvida para um
prazo para minimizar as infestações
contexto específico e leva em consideração ose seu impacto econômico.
aspectos ambientais e econômicos específicosde uma região e/ou fazenda. É, portanto,
baseada na realidade das operações agrícolas e nas práticas do campo. Uma estratégiade MIP deve sempre visar prevenir a incidência de pragas em primeiro lugar, e priorizar ocrescimento de um cultivo saudável, conservar/aumentar os inimigos naturais, monitorar ocultivo regularmente, minimizar o uso de químicos através de, por exemplo, não realizar
calendário de aplicações mas sim embasar o uso de agroquímicos onde a necessidade forobservada na fazenda.

1 Requisito Básico: Estes são os requisitos que sempre devem ser cumpridos para obter a certificação. A maioria dos requisitos básicos prescreve boas

práticas com respeito aos principais tópicos de risco para a sustentabilidade e estão formulados como requisitos de conformidade (binários,
aprovação/reprovação).
Requisito de Melhoria Mandatória: Desenhados para promover e mensurar progressos. Os requisitos de melhoria mandatória precisam ser incluídos na
conformidade com a norma à medida que o produtor ou grupo de produtores avança na sua jornada de sustentabilidade.
Requisito Medidor: Os Medidores visam dar aos produtores um meio estruturado de incorporar melhoria contínua em dados específicos ao contexto. Os
Medidores não tem metas predefinidas pela Rainforest Alliance. Ao invés disso, os produtores estabelecem as metas para estes indicadores e definem asações adequadas a serem tomadas para realizarem estas melhorias. Os produtores conduzem uma avaliação básica para definir metas para estes
indicadores no ano 0 ou ano 1 (dependendo do requisito), planejam e implementam ações para atingirem estas metas e então monitoram o progresso
em direção à essas metas. Produtores usam os dados dos indicadores para refletirem quanto ao seu progresso anual, e adaptarem as atividades no casoem que pouco ou nenhum progresso é demonstrado. Isso fornece aos produtores um ciclo de retroalimentação para que possam melhorar suas práticas
de maneira constante.

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Elementos cruciais da estratégia de MIP.
•••

Prevenção e supressão das pragas.
Monitoramento das pragas para identificar sua presença e avaliar se intervenções
são necessárias (com base nos níveis de tolerância).
Intervenção ao determinar as ações de controle de pragas como práticas culturais,
mecanismos físicos e biológicos ou pesticidas de baixa toxicidade não restritos.

Veja um exemplo de uma estratégia de MIP para afídeos neste link:
http://ipm.ucanr.edu/PMG/PESTNOTES/pn7404.html

Prevenção

MIP
Intervenção

Monitoramento

1. PREVENÇÃO e supressão das pragas significa prevenir que os números de pragas

aumentem. Medidas preventivas sempre são priorizados em uma estratégia de MIP.
As atividades incluem [mas não se limitam a]:• Utilizar material de plantio tolerante ou resistente e evitar o plantio de variedades
que sejam atrativos de pragas importantes.
• Prevenir a introdução de pragas na fazenda: manter o material de plantio
saudável, inclusive nos viveiros.
• Não plantar o cultivo em áreas da fazenda onde as pragas possam seestabelecer.
• Eliminar abrigos alternativos de insetos que sejam pragas ou causem doenças(roçada seletiva).
• Prevenir a dispersão das pragas entre os diferentes campos na fazenda (limpeza
do equipamento, roupas, etc., entre as visitas de campo).
• Prevenir o desenvolvimento de pragas dentro de campos na fazenda (rotação
do cultivo, irrigação adequada, espaçamento das plantas adequado,
prevenção da reprodução de ervas daninhas e manutenção de bons níveis desombra).
• Realizar as fertilizações apropriadas com base nas análises de solo, mantendo a
saúde de solo com conteúdo adequado de matéria orgânica.
• Ausência de lavragem da terra (se aplicável).
• Preservar e melhorar os inimigos naturais das pragas ao limitar a aplicação depesticidas ou ao aumentar a diversificação espacial e temporal, por exemplo,
ao manter cobertura viva ou preservar fragmentos de vegetação natural dentro
ou ao redor da fazenda que servem de refúgio e fonte de alimentação para
pragas ou inimigos naturais.
• Uso de cultivos como armadilha e/ou armadilhas com feromônios.
• Manejo dos resíduos do cultivo

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2. Monitoramento de pragas significa manter atenção e avaliar se, quando e como as
intervenções devem ser utilizadas para controlar as populações de pragas
estabelecidas para prevenir perdas econômicas.
Verifique o requisito 4.5.2 para mais detalhes.
3. Intervenção: essa é uma ação para controlar o número de pragas e reduzir as
populações de pragas. Também chamada de medida de controle.
Verifique o requisito 4.5.3 para mais detalhes.

EXEMPLOS DE PERGUNTAS PARA ELABORAÇÃO DE UMABOA ESTRATÉGIA DE MIP.
Prevenção:- Identifique se o material de plantio está susceptível ou é tolerante a quais pragas edoenças. Economicamente, é a principal praga em sua área?
- Quais são as pragas mais importantes do ponto de vista econômico em sua
fazenda?
- Identifique as áreas na fazenda que são susceptíveis aos ataques de pragas.
- Identifique a causa por trás (baixa fertilidade do solo, fertilização incorreta (nãobaseadas em análise de solo), erosão, alagamento ou seca, condições
desfavoráveis de luz, temperatura inadequada, variedade de cultivo inadequada,
monocultivo, etc.). Planeje medidas de prevenção para mudar essas condições
para ajustar a fertilização, adicionar matéria orgânica, ajustar as condições
microclimáticas, adicionar diversidade de plantas.
- Identifique pragas comuns (pragas que são insetos ou que causam doenças, ervas
daninhas) que regularmente causam problemas.
- Identifique condições que sejam favoráveis para o aumento dos incidentes com
pragas (período do ano ou ciclo do cultivo, condições de chuva ou seca, flutuações
de temperatura etc.). Você deve aumentar o monitoramento quando essas
condições ocorrerem.
- Sempre mantenha os fragmentos de vegetação natural (assegurando que não hajahospedeiros alternativos para as pragas), preferivelmente que tenham plantas em
florada e uma boa mistura de arbustos que possa servir de refúgio e fonte dealimento para inimigos naturais.
Monitoramento- Estabeleça procedimentos de monitoramento e observação, e sua programação
para as principais pragas: responda as seguintes perguntas: quantas árvores ou
plantas devem ser monitoradas por hectare? Com que frequência?
- Monitore-as de forma regular (no mínimo a cada duas semanas) e registre seus
números e níveis de infestação, bem como a data e localização da amostragem.
- Identifique os principais inimigos naturais das pragas e registre seus números, estágiode vida bem como o local da amostragem.
- Mantenha registros dos resultados de monitoramento no contexto das condições por
trás dessa situação (estágio do cultivo, local, clima, condições climáticas
prevalecentes, temperatura e suas flutuações no dia/noite etc.).
- Pesquise e conheça os limites de tolerâncias das pragas mais importantes em sua
fazenda. Defina os níveis de tolerância nos quais o cultivo não pode mais suportar apresença das pragas e nos quais a perda causará maior dano econômico que ocusto da intervenção escolhida.
Intervenção
Intervenha APENAS quando os limites econômicos indicarem. Em primeiro lugar, sempre use
as opções não-químicas.

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-

Identifique possíveis métodos de controle para cada praga na seguinte ordem depreferência:
1. Você pode manejar a praga utilizando boas práticas agrícolas como o manejo
da fertilidade do solo, sombreamento adequado, gestão hídrica, encorajamento
de inimigos naturais.
2. Métodos de controle físicos e culturais: poda das partes infestadas das plantas.
Você pode fazer uma limpeza geral do cultivo? Morte por via física ou coleta do
inseto, roçada manual. Armadilhas são uma possibilidade? Existem feromônios esistemas de armadilhas para as pragas? Você pode cobrir os frutos fisicamente?
3. Controle biológico (das pragas): você pode comprar inimigos naturais
comercialmente disponíveis e liberá-los em sua fazenda? Você pode fazer algopara melhorar a conservação da biodiversidade e criar fragmentos onde os
inimigos naturais possam viver e se alimentar? O inimigo natural pode não estar
presente na sua fazenda por falta de seu habitat. Fornecer esse habitat e
alimento para o inimigo natural pode incentivar seu estabelecimento.
4. Pesticidas “suaves” ou aqueles aprovados para uso em agricultura orgânica: aaplicação de soluções saponáceas ou extrato de alho, extrato de pimenta ou
Nim ou outras plantas é uma opção?
5. A aplicação localizada dos pesticidas químicos com a menor toxicidade possível
seguindo as instruções do rótulo. Note que as aplicações localizadas para
nematoides são difíceis de realizar.
6. Pesticidas químicos de mais baixa toxicidade e mais alta seletividade possíveis.
Não aplique pesticidas presentes na Lista de Pesticidas Proibidos da RA e evite os
pesticidas na Lista de Mitigação de Risco. Se o último não for possível, por favorsiga as medidas de mitigação de risco indicadas.
Use os registros para melhor entender a incidência da praga e realize cursos subjacentes
para melhorar sua estratégia de MIP de forma contínua. A Estratégia de MIP precisa seratualizada anualmente.

REQUISITO BÁSICO 4.5.2
Produtores regularmente monitoram pragas e seus principais inimigos naturais. Os registrosde monitoramento são mantidos por fazendas grandes e pela gerência do grupo para uma
amostra representativa de produtores. Os registros incluem data, tipo de praga e inseto
benéfico2.

Objetivo
Avaliar a severidade das infestações das pragas e a presença dos inimigos naturais paraguiar a decisão sobre as intervenções de MIP.

Aplicabilidade
Esse requisito básico é aplicável a todos os tipos de produtores. Isso significa que pequenas
fazendas, grandes fazendas e gerência do grupo dentro de certificação em grupo, eDetentores de Certificado individual.
No caso de certificação em grupo, a gerência do grupo é responsável por manter osregistros de uma amostra representativa de produtores.

Como implementar
Após a prevenção da praga (veja acima), o segundo componente mais importante de uma
estratégia de MIP é o monitoramento. Isso inclui inspecionar os campos e a observação 3 desinais precoces de possíveis infestações de pragas ou doenças ou de ervas daninhas
agressivas para prevenir sua proliferação. Os produtores e assessores devem regularmente
2 O termo inseto benéfico deve ser lido neste guia como “inimigo natural”, pois não compreende apenas insetos, mas também outros organismos que

realizam controle biológico.
3 Observação é inspecionar um campo em relação a presença de pragas (incluindo insetos, ervas daninhas e patógenos); Monitoramento é aobservação em campo de forma regular para descobrir como as populações de pragas se desenvolveram ao longo do tempo.

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inspecionar as fazendas e os cultivos, especialmente durante os momentos do ciclo do
cultivo que são conhecidos como sendo susceptíveis ou durante condições climáticas que
foram identificadas como promotoras de infestações de pragas, doenças e ervas daninhas.
Também é muito importante monitorar os inimigos naturais das pragas. Onde existem
inimigos naturais, as pragas não serão capazes de se reproduzirem e não ficarão fora decontrole. Os inimigos naturais podem ser predadores, parasitoides ou microrganismos como
fungos, bactérias e vírus ou insetos que comem ervas daninhas. É importante observar sevocê encontra apenas 10 insetos que são pragas ou se encontra 10 insetos que são pragas
juntamente com dois inimigos naturais. Conhecer os inimigos naturais que estão presentes éimportante para informar sua escolha de intervenções. Veja o Capítulo H para exemplos deinimigos naturais.
A observação pode ser feita visualmente, ao selecionar um certo número de plantas ouárvores e inspecioná-las de forma aleatória e se assegurando de cobrir todo o campo deforma a não perder pragas/inimigos naturais que se agregam em certos locais. O
monitoramento deve seguir uma abordagem sistemática (sempre utilizar o mesmo padrão
de observação e método de amostragem apropriado para a praga (ou estágio de vida)
específica). A recomendação é elaborar protocolos sobre como observar todas as pragas
e inimigos naturais e incluí-los na estratégia do MIP. O treinamento dos produtores e pessoal
técnico sobre como observar as pragas também é necessário.
Outra forma menos precisa de monitorar os insetos que são pragas é utilizar armadilhas
pegajosas com feromônios, mas sua precisão precisa ser ajustada ao seu específico
problema de pragas.
Monitoramento não é suficiente. É crucial também registrar (anotar) o que é observado. É
importante elaborar um modelo que capture as informações relevantes para as específicas
condições e circunstâncias da fazenda, incluindo a prevalência/nível de infestação das
pragas, doenças e ervas daninhas observadas. Sempre registrar:• O tipo de praga e/ou inimigos naturais vistos.
• O número de pragas por árvore ou planta ou seu nível de infestação observado.
• A data e hora da amostragem e o local onde os dados foram coletados ou onde aarmadilha foi colocada.
Assegure-se de monitorar e registrar com a maior frequência possível para ver a progressão
da infestação e para evitar que as pragas fiquem fora do controle. Inicie os registros o maiscedo possível e preste atenção a todas as (potenciais) pragas mesmo se elas ainda apenas
ocorrerem em números muito pequenos e em locais específicos. Registros precisos e
atualizados apoiam a programação de visitas futuras de monitoramento e servem comoindicadores de quando intervir com medidas de controle.

Recomendação aos grupos:
Registrar as pragas encontradas na área4 e identificá-las. Juntar informações sobre seus
estágios de vida, alimentação e ciclos de reprodução e os sintomas de sua presença nos
cultivos. Para doenças, busque aconselhamento e informações nas agências
governamentais de agricultura , especialistas em proteção de cultivos ou outras fontes
para identificar a doença, sua causa e possíveis rotas de transmissão de doenças. Forneça
essa informação para todos os produtores com ilustrações ou com espécimes vivos.
Identifique os momentos e conduções sob as quais essas pragas geralmente se tornam
invasivas e elabore um plano de monitoramento ou observação apropriado. Insira essa
informação na estratégia de MIP.

4 Para determinar a porcentagem de infestação (por exemplo, em folhas) amostras devem ser tomadas ao longo da área de forma aleatória e acontagem dos incidentes de dano/infestação/número de pragas, etc. Exemplo de cálculo: 35 de 100 == 35% de infestação.

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Exemplo de uma programação de monitoramento e reporte:
Em uma plantação de café na Colômbia, o plano de monitoramento da broca do café foi
elaborado. A pessoa fez uma amostragem fazendo um ziguezague através da fazenda, ealeatoriamente amostrou 30 árvores por hectare. Para cada árvore amostrada, um ramo
representativo da parte central da árvore foi selecionado e todas as cerejas em
desenvolvimento foram examinadas para ver se tinham buracos de entrada da broca do
café5. O número total de cerejas por ramo e o número de cerejas infestadas foram
registrados. O nível de infestação é calculado como a porcentagem de cerejas infestadas
do total de cerejas amostradas.
Abaixo está um exemplo de um modelo para registrar informações das pragas e inimigos
naturais para café.
Nome da fazenda:_______________________ Quadra/ local de amostragem _______________
Nome da pessoa coletando os dados:_______________________
Praga: Broca do caféDataÁrvore/planta3 de Junho
1de 20202

10 de Junhode 2020

17 de Junhode 2020…..
30
1

Número:Notas:

30 cerejas
com buracos

Começandoapenetração
na cereja
Brocasdentro do
fruto.

5 cerejas
com buracos

Inimigonatural:BeauveriabassianaNão

Número:Notas:

5 cerejas
infestadas
porbroca.
Não

Brocasmortas

0

….
30
1

….
30
Praga: Ferrugem do caféDataÁrvore/ Número:planta3 de Junho
1
5 folhasde 2020
com X Nºde pústulas.
2
…..
30
0
10 de Junho 1
de 2020….
30
17 de Junho 1
de 2020….
30

Notas:

Inimigonatural:Trichoderma

Número:NãoNãoNotas:

Nota: veja que existem protocolos de amostragem para cada praga. Informe-se sobre a forma e o número deamostras corretos antes de iniciar o monitoramento. Note que o monitoramento das pragas e os inimigos
naturais devem ser realizadas ao menos a cada duas semanas: Idealmente, quando as condições/períodos do
ano são propícios para a proliferação de pragas/doenças, isso deve ser feito a cada semana.

5 Implementação de um programa de manejo integrado de pragas em uma plantação de cafés especiais na Colômbia; Luis F. Aristizábal, et al; Journalof integrated pest management, volume 3, edição1, 1 Março 2012, páginas g1–g5

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REQUISITO BÁSICO 4.5.3
Para a prevenção e controle de pragas, os produtores utilizam primeiramente métodos decontrole biológico, métodos físicos e outros métodos não-químicos, e documentam o uso ea efetividade desses métodos. Quando os níveis de tolerância das pragas são atingidos, os
produtores podem fazer aplicações de agroquímicos, conforme orientação de um técnicocompetente e/ou assessoria ou instrução de uma organização nacional oficial. Quando
agroquímicos são utilizados:• Agroquímicos com a menor toxicidade possível e mais alta seletividade são usados.
• As aplicações são feitas apenas nas plantas e áreas impactadas.
• Os Ingredientes ativos são rotacionados para evitar e reduzir resistência.
• Calendários de aplicação são evitados, e apenas permitidos quando
recomendados por um técnico competente ou organização nacional oficial.

Objetivo
Métodos não químicos de prevenção e controle são usados primeiro. Os níveis de tolerância
são usados para decidir quando usar o controle químico, e se utilizado, as aplicações
químicas não prejudicam as pessoas ou o ambiente.

Aplicabilidade
Esse requisito básico é aplicável à pequenas fazendas e fazendas grandes dentro decertificação em grupo e para fazendas individualmente certificadas.

Como implementar
Uma vez que esse é um requisito complexo, dividimos sua explicação em três partes.
Parte I: Métodos não químicos de prevenção e controle.
Parte II: Níveis de tolerância
Parte III: Condições prévias para aplicação de agroquímicos.
Parte I: Para a prevenção e controle de pragas, os produtores utilizam primeiramente
métodos de controle biológico, métodos físicos e outros métodos não-químicos, edocumentam o uso e a efetividade desses métodos.
Existem muitas alternativas a serem escolhidas quando se refere a métodos não químicos deprevenção e controle. Estas devem ser consideradas antes mesmo de começar a pensar
em fazer o controle químicos (aplicações de pesticidas). Elas incluem intervenções culturais,
físicas e biológicas.

Controle físico
São métodos de controle que visam utilizar características físicas do ambiente ou autilização de métodos mecânicos para ferir as pragas ou reduzir suas populações. Por
exemplo, temperatura, ou barreiras físicas, ou água aplicada com pressão, corte, trituração,etc.
Existem muitos métodos diferentes para o controle físico. Alguns deles são:••••Manipulação de condições microclimáticas, como poda ou uso do sol para solarizar
o solo.
A chuva parece remover os ácaros, portanto, um forte jato de água de uma
mangueira pode ser usado para remover os ácaros e outros pequenos insetos.
Remoção ou destruição de pragas, como roçada manual, destruição de resíduos
de cultivo, poda para remover partes infectadas ou pragas em estágios preliminares(ovos, larvas), coleta manual de insetos grandes.
Armadilhas, como a luz, cor ou armadilhas pegajosas, ou armadilhas com atrativos(feromônios, kairomônios).

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•
•
•

•

Uso de repelentes: substâncias que desorientam pragas e não as deixam encontrar
sua planta hospedeira com facilidade.
Sacos: frutas de valor são, geralmente, cobertas com sacos individuais para protegêlas de ataques de insetos. Esse método demanda muito tempo e mão-de-obra, maspode levar a bons resultados.
Coberturas de poliéster para as camas das plantas para prevenir que os ovos dos
insetos sejam postos ou para suprimir ervas daninhas, ou armadilhas redes, ou
coberturas plásticas sobre as plantas ou frutas para manter insetos e pássaros
distantes.
Queimar árvores ou partes das plantas que estejam infectadas e que foram
atacadas demasiadamente.

Controle cultural
Métodos de controle cultural são muito similares aos métodos utilizados durante a
prevenção. Esses métodos são para evitar a promoção de ambientes que sejam propícios
a pragas e doenças, ou métodos que levam a condições que sejam prejudiciais para
pragas e doenças. Exemplos incluem sanidade do cultivo, poda de partes doentes das
plantas ou erradicação de plantas inteiras (também um método físico), manipulação das
datas de plantio e colheita para evitar populações de pragas etc., ou a introdução deestruturas para fazer do agroecossistema um bom lugar para inimigos naturais.
Alguns exemplos de controle cultural são:• Diversificação agrícola ou multicultivos. A produção de vários cultivos na
fazenda pode torná-la mais resiliente aos ataques de pragas.
• Manter um cultivo de cobertura que pode melhorar as condições do solo e,
ao mesmo tempo, servir de refúgio ou fonte de alimento para inimigos naturais
e evitar o estabelecimento de ervas daninhas prejudiciais.
• Plantio de borda. Plantado ao redor do campo.
• Cultivos armadilha. Estas são plantas que são mais atraentes para as pragas
do que o cultivo principal. Uma vez que as pragas estejam ali, podem ser
mortas.
• Cobertura do solo (Mulching). São camadas de material aplicado na
superfície de uma área de solo. Podem ser feitas de material como plástico ou
redes (para controle das ervas daninha ou para excluir pragas e paraesquentar solos frios) ou podem ser coberturas vivas como ervas queflorescem, que ajudam a melhorar a condição do solo e aumentam a
biodiversidade.
• Colheita eficiente que possa quebrar os ciclos das pragas (evitar infestação
novamente).

Controle biológico
O controle biológico é o uso de inimigos naturais de pragas para manejar problemas depragas. O controle biológico pode ser altamente seletivo, e existem raros efeitos colaterais
negativos. Os organismos liberados (microrganismos ou inimigos naturais) podem serestabelecidos em uma fazenda, e se usados precocemente podem se reproduzir em um
ritmo que mantenha o número de pragas dentro de limites aceitáveis.
Alguns exemplos de inimigos naturais incluem:• Predadores, que podem ser principalmente espécies de vida livre que consome um
grande número de presas durante sua vida, como o louva-deus, joaninha, besouros,
aranhas, vespas, insetos e libélulas. Os predadores não são necessariamente apenas
insetos. Pássaros também são predadores muito importantes que controlam pragas,
tais como lagartas ou besouros.
• Parasitoides: insetos cujas larvas se desenvolvem dentro dos corpos, ovos ou larvasde outros insetos, ao final os matando. Muitas espécies de vespas e algumas moscas
são parasitoides. Alguns desses insetos parasitoides estão comercialmente
disponíveis.

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•

Microrganismos ou patógenos como fungos, bactérias e vírus. Assim como os
humanos ficam doentes com microrganismos, os insetos também ficam. Exemplos
são Beauveria bassiana e Metarhizium anisopliae dois fungos que podem manter as
pragas como ácaros, Tripes, besouros e afídios. Alguns desses fungos estão
disponíveis comercialmente, mas também podem estar presentes naturalmente na
sua fazenda.

Aumentar o número de inimigos naturais na fazenda para que possam controlar as pragas.
A opção mais fácil e rápida é promover os inimigos naturais que vivem na fazenda e estão
adaptados ao meio ambiente local. Para isso, os habitats precisam ser preparados e
conservados (florada, faixas, margens e plantio de plantas aromáticas). Quando conserva osolo, manejando as ervas daninhas mantendo plantas que florescem na plantação, e ocobrindo com vegetação natural, isso serve de habitat para inimigos naturais. Fontes deágua conservadas se tornam habitats para predadores. Árvores nativas plantadas se
tornam habitats para pássaros e morcegos. Todas essas práticas contribuem para o MIP.
Áreas de conservação bem manejadas promovem os inimigos naturais que previnem osurgimento de problemas de pragas, para que intervenções adicionais como aplicações
químicas não sejam necessárias ou que possam ser reduzidas.
Uma alternativa é comprar inimigos naturais da mesma forma que você compra pesticidas.
Muitas empresas produzem e vendem inimigos naturais que podem ser muito efetivos ao
controlar as pragas. Mas também podem ser caros e os inimigos naturais podem não seadaptarem tão bem às condições locais pois não viveram lá.
É preciso ter atenção sempre ao introduzir novas espécies de insetos que não sejamendêmicas de um país ou região já que podem não ser capazes de sustentar uma
população, ou sua população pode sair do controle se seus próprios inimigos naturais nãoestão presentes, e então se tornarem uma praga. Se você estiver liberando inimigos naturais
de forma artificial em sua plantação, sempre faça isso sob a orientação de um profissional
competente.
Parte II: Quando os níveis de tolerância de pragas são atingidos, os produtores podem fazer
aplicações de agroquímicos, conforme orientação de um técnico competente e/ou
assessoria ou instrução de uma organização nacional oficial.

O que são níveis de tolerância?
A erradicação ou o controle total de pragas, em muitos casos, não é necessária (ou até
mesmo desejável) para garantir a lucratividade. Quase todos os cultivos podem tolerar uma
certa quantidade de dano de pragas sem afetar sua produtividade. O foco deve ser,portanto, a determinação da relação entre o nível de dano que uma praga causa e aprodutividade do cultivo, e estabelecer quais são os níveis de danos ou as densidades
populacionais das pragas que são aceitáveis. Dessa forma, um produtor pode saber se os
custos de controle de uma praga é maior que o dano que essa praga pode eventualmentecausar.
Existem dois níveis de tolerância:
1. O primeiro é o Nível de Dano Econômico (NDE), que é o ponto onde o valor do cultivo
perdido supera o gasto de um método de controle. Se um método de controle éutilizado em um nível de população de praga que está abaixo do NDE, o produtor
perde dinheiro pois o custo de intervenção é maior que a quantidade recebida decultivo que foi salva. Se o produtor espera até que a população de pragas aumente
acima do NDE, então se perdeu mais cultivo que o custo da intervenção. Na teoria,
intervir um pouco antes do NDE sempre maximiza o lucro. O produtor precisará manteras populações de pragas abaixo do NDE ou tomar alguma ação antes que a
população de pragas atinja o NDE e que cause danos econômico.

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2. O segundo nível de tolerância é a Tolerância Econômica (TE). Isso se refere à
densidade de uma praga na qual as medidas de controle devem ser implementadas
para que atinja o Nível de Dano Econômico’. Essa tolerância sempre representa uma
densidade de pragas ou nível do dano de pragas abaixo do NDE (geralmente 80% do
NDE).
É importante ter uma boa ideia dos níveis de tolerância das principais pragas em seus
cultivos principais, e preparar um plano de ação específico no caso em que os níveis detolerância sejam ultrapassados. É também muito importante monitorar a população deinimigos naturais. Instituições governamentais e de pesquisa podem também serem
capazes de fornecer orientações com relação às tolerâncias comuns para pragas edoenças em uma particular região.
Veja as orientações de cultivo específicas para cacau, café, chá e banana no final desde
documento.
Nota: Os níveis de tolerância dados neste documento são baseados em revisão de literatura
e devem ser usados apenas como uma indicação. As estratégias de MIP devem levar em
consideração parâmetros contextuais e experiência local.
Parte III: Quando agroquímicos são utilizados:• Agroquímicos com a menor toxicidade possível e mais alta seletividade são usados.
• As aplicações são feitas apenas nas plantas e áreas impactadas.
• Os Ingredientes ativos são rotacionados para evitar e reduzir resistência;• Calendários de aplicação são evitados, e apenas permitidos quando recomendados
por um técnico competente ou organização nacional oficial.

Uso de agroquímicos
Muitos programas ‘considerados’ de MIP são baseados no amplo uso de pesticidas
sintéticos (isto é, inseticidas, fungicidas, nematicidas, herbicidas, raticidas), mas isso não estáde acordo com os princípios de MIP.
Essa abordagem popular de primeiro combater pragas e doenças através da aplicação depesticidas não é um programa de MIP e tem criado problemas, como problemas com
pragas secundárias, pragas resistentes e um aumento de novas pragas como uma
consequência da morte dos inimigos naturais. O uso indiscriminado de pesticidas, além deser prejudicial para a saúde humana e do ambiente, sempre prejudica as populações deinimigos naturais que apoiam o controle de pragas e leva a ciclos viciosos de um número
crescente de infestações de pragas.
O controle químico deve ser usado apenas se os controles culturais, físicos e/ou biológicos
foram aplicados e as pragas ainda estiverem atingindo os níveis de tolerância. Ao usar
pesticidas químicos, a norma Rainforest Alliance demanda que:
1. O pesticida seja registrado para uso em seu país.
2. Prioridade seja dada a pesticidas com a menor toxicidade possível. Para isso, sempre
siga o rótulo do pesticida e a FSM (Ficha de Segurança de Materiais). As embalagens
de pesticidas tem rótulos de alerta que indicam o nível de toxicidade utilizando um
código de cores (veja abaixo6). Isso é baseado nos requisitos da Organização
Mundial da Saúde (OMS). A OMS classifica os pesticidas por perigo com base na sua
dose letal oral e dérmica (DL50), isto é, quanto de pesticida mataria uma pessoa seele for absorvido pela boca ou pela pele. Cada inseticida, então, é classificado em
quatro classes: 1A, extremamente perigoso; 1B, altamente perigoso; II,moderadamente perigoso; III, ligeiramente perigoso.
6 http://www.fao.org/3/a-i4854e.pdf

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Você deve garantir que as pessoas que manipulam pesticidas também leiam, entendam e
cumpram com a informação e as instruções fornecidas no rótulo do produto e na FSM. Se a
FSM não estiver disponível no seu país, você pode contatar sua agência local
governamental, fornecedor ou fabricante do pesticida para obter essa informação. É sua
responsabilidade disponibilizar essa informação para todos os envolvidos no manuseio depesticidas no seu grupo ou fazenda.

Figura 2. Código de cores indicando o nível de toxicidade de um pesticida. Fonte: OMS. 2010. Classificação
recomendada pela OMS de pesticidas por perigo e orientações para classificação, 2019. Organização Mundial
da Saúde, Genebra [Disponível em: http://www.who.int/ipcs/publications/pesticides_hazard/en/index.html]

3. O controle químico deve ser usado através de aplicações localizadas/por precisão7,
isso significa apenas onde for necessário (áreas com alta concentração de pragas) e
não em toda a quadra ou fazenda. Se os pesticidas forem aplicados em áreas ondenão estão presentes, eles também matarão organismos benéficos.
4. Os Ingredientes ativos são rotacionados para evitar e reduzir resistência. Todos ospesticidas tem um “modo de ação” que se refere a forma na qual ele ativamente
perturba as populações de pragas em seu local alvo. Se pesticidas com os mesmos
modos de ação são aplicados continuamente e repetidamente, as pragas
desenvolverão resistência. Isso significa que em algum ponto elas não mais serão
mortas pelos pesticidas. Para evitar isso, sempre faça a rotação entre pesticidas com
diferentes modos de ação. Você pode encontrar informação sobre como rotacionaros modos de ação no site da IRAC: https://irac-online.org/modes-of-action/. Ou vocêpode baixar esse aplicativo aqui:
https://play.google.com/store/apps/details?id=irac.moa&hl=en. Esse aplicativo é
uma base de dados fácil de usar, que lhe permite identificar ingredientes ativos
inseticidas e seus respectivos grupos de Modos de Ação, para que você sabia comofazer sua rotação.
5. Pesticidas sintéticos não devem ser aplicados com base em uma programação fixa,
por fenologia do cultivo ou por calendário de aplicação. Isso é permitido apenas
quando recomendado por um técnico competente ou organização nacional oficial.

Além disso, sempre lembramos que...
••

Cada país tem suas próprias regulações para pesticidas. Produtos registrados e
aprovadas variam de país para país. É por isso que é importante verificar sua
legislação nacional.
Se há diferença entre o que é permitido em seu país e na lista da Rainforest Alliance,a norma mais estrita prevalece. Isso significa que os pesticidas permitidos e

7Aplicações localizadas não são possíveis para infestações generalizadas de nematoides.

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••registrados em seu país não podem ser utilizados se eles estiverem incluídos na Listade Pesticidas Proibidos da Rainforest Alliance e vice-versa.
A Lista de Pesticidas Proibidos da Rainforest Alliance (Anexo S7 da Norma deAgricultura Sustentável 2020) inclui os nomes dos ingredientes ativos e não o nomecomercial do produto pesticida. Isso se deve ao fato que os pesticidas são
registrados com diferentes nomes comerciais em países diferentes, mas o ingrediente
ativo tem o mesmo nome no mundo inteiro.
Se as substâncias da Lista de Mitigação de Risco da Rainforest Alliance (Anexo S7 da
Norma de Agricultura Sustentável 2020) são utilizadas, isso é feito dentro da
implementação da Estratégia de MIP, e as respectivas medidas são tomadas para
minimizar os riscos.

REQUISITO BÁSICO 4.5.4
Produtores e trabalhadores que estão envolvidos nas atividades de manejo de pragas são
treinados sobre a estratégia de MIP.

Objetivo
Todas as pessoas envolvidas na produção da fazenda entendem o conceito e os princípios
do MIP e são capazes de realizar suas atividades adequadamente.

Aplicabilidade
Esse requisito básico é aplicável a todos. Isso significa que pequenas fazendas, grandes
fazendas e gerência do grupo dentro de certificação em grupo, e Detentores deCertificado individual.

Como implementar
Fornecer treinamentos e conhecimentos sobre o MIP ajudará a implementar um bomprograma. Você precisará garantir que:
• Os produtores estão cientes das pragas mais comuns na fazenda e sobre o que
pode ser feito para reduzir suas populações, e sabem onde encontrar informações
sobre pragas e medidas de controle.
• A pessoa responsável pelo desenvolvimento e pelo monitoramento da estratégia de
MIP tem os conhecimentos e habilidades requeridas.
• O treinamento é dado regularmente e registros ou treinamentos são mantidos
atualizados.
• Os treinamentos são de boa qualidade, endereçam os reais problemas das pragas
encontrados na fazenda, incluindo exemplos práticos, e são ministrados por uma
pessoa qualificada.
Escolas de Campo podem ser estabelecidas para apoiar seus membros. Isso foi
demonstrado como uma modo efetivo de adotar o MIP. Quadras de demonstração podem
ajudar a mostrar experiências bem-sucedidas com relação ao controle das pragas.

MELHORIA MANDATÓRIA 4.5.5 (N1)
Todos os produtores implementam a estratégia de MIP.

Objetivo
As fazendas pequenas implementam a estratégia de MIP conforme elaborada pelagerência do grupo e os níveis de pragas são mantidos sob controle.

Aplicabilidade
Esse requisito básico é aplicável apenas a fazendas pequenas.

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Como implementar
A seguinte lista de afazeres mostra um conjunto de informações para serem coletadas em
nível de fazenda para identificar se a estratégia de MIP está implementada e funcionando:
Lista de afazeres

Sim/ Não

Pendente. Por quê?

Prevenindo o problema ou praga e seus inimigos naturais
Todos os componentes de prevenção que se aplicam à
fazenda estão implementados.
O solo está em condições saudáveis.
O material de plantio é tolerante às pragas na fazenda eestá em condições saudáveis.
Os produtores realizam todas as boas práticas agrícolasque são recomendadas para o cultivo.
A fazenda é biodiversa e tem fragmentos de vegetação
natural, jardins floridos, áreas ripárias, etc., que servem
como refúgios e fontes de alimentação para os inimigos
naturais.

Identificando o problema ou praga e seus inimigos naturais
Os produtores tem um entendimento muito claro sobre as
principais pragas do cultivo, o dano que causam e seus
ciclos e estágios de desenvolvimento.
Os produtores tem um bom entendimento dos principais
inimigos naturais das principais pragas presentes na
fazenda e sobre como cuidá-las e promovê-las.

Determinar a severidade do problema
Os produtores conhecem os níveis de tolerância das
principais pragas no cultivo. Eles conhecem quantidadede dano que é tolerável e quando tomar ações.
Os produtores monitoram e registram (no mínimo a cadaduas semanas), os números de pragas e inimigos naturais
por local e sabem exatamente quando devem
implementar medidas de controle.

Avaliar as opções de manejo (fazer nada, controle físico, cultural, biológico, químico?)
Os produtores tem uma ideia clara dos tipos de medidas
não-químicas que podem implementar na fazenda e
onde. Eles conhecem que tipos de medidas de controle
cultural e físico funcionarão.
Os produtores sabem quais as vantagens e desvantagens
e custos de utilizar cada método.
Os produtores sabem se armadilhas são viáveis.

Medir o sucesso das opções empregadas. Registrar os resultados
Os produtores registram os resultados da utilização dos
métodos não-químicos e sabem se foram bem-sucedidosou não.
Os produtores tem clareza em relação quando eles
devem aplicar um pesticida e em como escolher a menor
toxicidade possível.
Se os produtores tiverem que aplicar um pesticida,primeiro realizam aplicações localizadas (não aplicável
para controle de nematoides).
Os produtores estão familiarizados com os diferentes
modos de ação dos pesticidas e sabem como fazer a sua
rotação.

Lembre-se que...
Para o sucesso da implementação das estratégias de MIP, a gerência do grupo deve
apoiar seus membros a assegurar que a lista das atividades acima foi implementada.

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MELHORIA MANDATÓRIA 4.5.6 (N2)
Produtores melhoram ecossistemas naturais perto de áreas de produção de cultivo paraaumentar o habitat de inimigos naturais. Exemplos são: insetários, plantio de árvores earbustos que atraem pássaros/morcegos/polinizadores, conversão de áreas rebaixadas em
pequenas lagoas com vegetação, e melhoria de áreas ripárias e de vegetação.

Objetivo
Ter uma fazenda onde a biodiversidade é conservada e que tenha lugares suficientes onde
os inimigos naturais das pragas podem viver, se alimentar e se desenvolver. Inimigos naturais
ajudam a manter os níveis de pragas sob controle.

Aplicabilidade
Esse requisito básico é aplicável a todos. Isso significa que pequenas fazendas, grandes
fazendas e gerência do grupo dentro de certificação em grupo, e Detentores deCertificado individual.

ORIENTAÇÕES GERAIS
Monoculturas em larga escala e monoculturas em geral fornecem pouco espaço ealimentação para organismos benéficos. Em um ambiente assim, organismos prejudiciais
podem se multiplicar rapidamente devido à ausência dos inimigos naturais.
A diversidade dos inimigos naturais é diretamente relacionada à diversidade das plantas,
uma vez que dependem de uma grande variedade de plantas selvagens. Muitos inimigos
naturais dependem de plantas em florada para fornecimento de néctar e pólen, ou
precisam de cercas para proteção bem como áreas de reprodução. Para ter um ambiente
saudável onde os inimigos naturais das pragas possam se desenvolver e onde a prevenção
é o componente mais importante do manejo de pragas, é crucial que os habitats naturais
da fazenda sejam ampliados e mantidos. Estes incluem fragmentos de vegetação natural,manutenção de culturas de cobertura, manutenção de fragmentos de florestas nativas,árvores e vegetações nativas ao redor de pequenos lagos e rios.
Alguns exemplos parecem assim:

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MEDIDOR MANDATÓRIO 4.5.7
Produtores monitoram e reduzem o uso de pesticidas.

Indicador
Ingredientes ativos por ha (kg/ha, anual ou por ciclo do cultivo).
Ingredientes ativos usados que estão listados na Lista de Uso Excepcional e Lista de
Mitigação de Risco.
Em grupos de fazendas pequenas, o indicador pode ser monitorado em uma amostra
representativa de fazendas.

Objetivo
Monitorar e ter dados precisos sobre o uso dos pesticidas e ser capaz de reduzir seu uso ao
longo do tempo.

Aplicabilidade
Esse requisito básico é aplicável a todos. Isso significa que fazendas pequenas, fazendas
grandes e a gerência do grupo dentro de certificação em grupo, e Detentores deCertificado individual.

Como implementar
Os produtores precisam ter dados precisos e definir metas viáveis de redução. A gerência
do grupo é responsável por monitorar esses dados para uma mostra representativas defazendas pequenas.
Para o primeiro indicador: Ingredientes ativos por ha (i.e., kg/ha, por ano ou por ciclo decultivo), os produtores devem saber quais produtos estão sendo aplicados e em quais
quantidades. Isso deve ser indicado não como nome comercial, mas como ingrediente
ativo. A quantidade deve ser dada em gramas ou quilogramas de ingrediente ativo porano, ou por ciclo de cultivo.
Para calcular os ingredientes ativos por ha (kg/ha, anual ou por ciclo do cultivo) de um
dado produto, os produtores precisam das seguintes informações:• Ingrediente Ativo em um dado produto em g ou kg (encontrado no rótulo em
porcentagem).
• Quantidade de produto aplicado por ano ou ciclo de cultivo (total).
• Nº de hectares onde o produto é aplicado.

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Por exemplo, você aplicou 8 litros de um produto, em 4 hectares ao longo do ano. O rótulo
do produto diz que isso contém 36% de ingrediente ativo. Isso significa que para cada 1 litro
ou 1 kg de produto, existem 360 gramas ou ml de ingrediente ativo. O que significa que 360
vezes 8 litros aplicados = 2.880 gramas (ou 2,88 Kg) de ingrediente ativo nos 4 hectares por
ano.
Para o segundo indicador: Ingredientes ativos usados que estão listados na Lista de Uso
Excepcional e Lista de Mitigação de Risco. Os produtores devem listar quais pesticidas queestão na Lista de Mitigação de Risco (Anexo S7 da Norma de Agricultura Sustentável) ou ospesticidas da Política de Uso Excepcional são utilizados.

MANEJO INTEGRADO DO MATO
Algumas informações gerais sobre o Manejo Integrado do Mato podem ser encontradas
aqui: Produção de Plantas e Divisão de Proteção: O que é o Manejo Integrado do Mato(fao.org)
Um bom plano para Manejo do Mato inclui:
1. Prevenir o desenvolvimento de ervas daninhas utilizando as seguintes intervenções
quando aplicáveis:• Conhecer suas principais ervas daninhas. O momento de sua florada e dedispersão de sementes.
• O manejo da margem do campo.
• Limpeza de sementes.
• Uso de culturas de cobertura.
• Cobertura (morta ou viva).
• Compostos alelopáticos.
• Culturas de cobertura.
• Momento e profundidade do cultivo.
2. Reduzir o impacto das ervas daninhas no cultivo através:• Escolha da variedade de planta.
• Arranjo espacial do cultivo.
• Roçada manual ou mecânica.
• Consórcio.
• Controle biológico (pragas que atacam as ervas daninhas).
3. Reduzir a dispersão de sementes ao:• Limpar o maquinário.
• Manejo da água e fertilizantes.
• Coleta e destruição de sementes de ervas daninhas.
• Último recurso: emergência e aplicação localizada de herbicidas pósemergência.
• Roçada manual.

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ORIENTAÇÕES ESPECÍFICAS PARA CAFÉ
Aviso legal
Essa orientação específica para cultivo de MIP não visa cobrir todas as pragas possíveis por
cultivos. A intenção é apresentar as pragas/doenças mais comuns que afetam certos
cultivos em várias regiões ao redor do mundo.

Introdução
É importante que você entenda que a planta de café é apenas um elemento do
ecossistema cafeeiro completo. Cada parte do ecossistema desempenha uma função,portanto, outros elementos precisam ser levados em consideração.

Informações Gerais
Recomendações para Café (Arábica e Robusta)
Escolha de um local
adequado para o cultivo.

Condiçõe
s decultivo
Para
Arábica

Condiçõe
s decultivo
Para
Robusta

AltitudeTemperatura
Chuva

Declividade
AltitudeTemperatura
Chuva

Declividade
Escolha de variedades decultivo saudáveis
adequadas para o local
Manutenção da saúde e
fertilidade do soloRegiões subtropicais e equatorianas em altas altitudes que
fornecem precipitação adequada e temperaturas
moderadas. O café robusta é melhor adaptado para altas
temperaturas que o Arábica. Condições de sombra que
imitam as condições florestais originais do café e fornecem
sombreamento suficiente durante as horas mais quentes do
dia mas não produzem microclima úmido em excesso, sãoideais para cafés de alta qualidade.
Acima de 1000 metros acima do nível do mar (m.a.n.m).
Até 2500 m.a.n.m. (Linha de geada) dependendo dalatitude.
Temperatura ideal diária: 15° - 25°C.
<1000 até 1500mm anualmente distribuídos de maneira
uniforme por 7 meses por ano, com um período de seca e
estresse posterior para induzir a florada uniforme.
Acima de 15%
200 m.a.n.m. - 1000 m.a.n.m.
De 20º até 30ºC.
De 1000 até 3000m anualmente distribuídos por 9 meses por
ano com uma temporada de chuvas bem definida para
desenvolvimento e uma época de seca e calor para
maturação.
Declividade mínima > 7%.
Preferência deve ser dada às variedades resistentes onde
possível. Bourbon Pointu/Laurina por exemplo são
conhecidos por serem muito susceptíveis à ferrugem.
Plantas enfraquecidas não apenas produzem um cultivo
ruim mas também são mais susceptíveis aos ataques depragas e doenças. Idealmente, os solos são analisados uma
vez por ano antes da florada e os tipos e quantidades
recomendadas de nutrientes são aplicadas.
Para cada 1 ton. de grãos removidos das plantas,
aproximadamente. 40 kg de N, 2,2 kg de P e 53 kg de K
devem ser repostos anualmente8. Aplicações de estercoorgânico juntamente com aplicações de fertilizantes
inorgânicos aumentam a taxa de absorção de nutrientes.
Faixa de pH (H20) recomendada: 5,5 - 6,0. Se a acidez dosolo estiver abaixo da faixa, a aplicação de cálcio é

8 As taxas de fertilização precisam ser calculadas considerando o tipo de solo, níveis de MOS, níveis dos nutrientes do solo e taxas médias de perdas.

Estimativa de perda média: N = 30-70% (mais alta em temperaturas mais altas e se exposta a O2 e H2O), P = 50-100% (mais alta em pH baixo e altos níveis
de Al e Fe no solo), K = 30%, Ca = 10%, Mg, Cu, Fe, Zn, B = 25%.

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Manutenção de níveis
adequados de matéria
orgânica no solo (MOS)

Manutenção decondições
microclimáticas
adequadas na plantação

Manutenção de níveis
adequados de sombra

recomendada para facilitar a absorção de P e outros
nutrientes.
(Para mais detalhes, veja o Documento de Orientação
para Solo).
MOS adequada de 1 a 3% é necessário para sustentar os
níveis de microrganismos benéficos, garantindo uma boa
drenagem (café é sensível a alagamentos), bem comoníveis adequados de retenção de água. Para aumentar emanter níveis de MOS adequados, adições frequentes deesterco animal ou composto são necessárias, bem como acobertura ou uso de culturas de cobertura com materiais
adequados (por exemplo, cultivos leguminosos ou mesmo
mato como Paspalum conjugatum).
A criação de um microclima na plantação que sejafavorável para a variedade cultivada de café edesfavorável para pragas e doenças pode ser um fator deprevenção crítico ou, ao menos, reduzir a severidade deuma infestação. Isso é especialmente importante durante
temporadas quentes e secas que podem ocorrer com
maior frequência durante as mudanças climáticas em
algumas áreas. Isso pode ser atingido com níveis
adequados de sombra, mas também através de coberturasde solo na forma de cobertura morta ou culturas decobertura (produção mista). A cobertura é mantida
distante da base da planta para reduzir o risco de doenças.
A cobertura é reaplicada no final da época de chuva.
Insetos benéficos como abelhas e inimigos naturais podem
ser atraídos para a área ao permitir fragmentos de plantas
nativas que florescem sejam cultivados na plantação,criando um ecossistema mais diversos e resiliente como
habitat para que proliferem.
Por essa razão, a roçada seletiva é encorajada. Roçada
seletiva significa eliminar as ervas daninhas mais invasivas
mantendo o mato baixo e de crescimento lento, se possível
leguminosas com raízes pequenas que podem ao final
parecer um carpete verde na fazenda e que conservarão
a umidade o solo, bem como prevenirão que outras ervas
daninhas cresçam, reduzindo a necessidade de herbicidas.
Níveis de sombra de 15% à 50% são recomendados,
dependendo do estágio de vida. A sombra protege plantas
jovens de café do estresse causado pela seca e pela
superexposição ao sol, o que causa o amarelamento e amorte das folhas, a dominância de plantas e/ou morte deárvores mais velhas. Sombra demais, no entanto, podereduzir a florada e criar um microclima muito úmido, o que
pode aumentar as doenças fúngicas. Portanto, o nível desombra precisa ser manejado alinhado com as condições
climáticas locais, bem como a pressão de pragas edoenças.
Leguminosas para sombra como Erythrina subumbrans,
Gliricidia sepium, Cassia siamea, ou Albizia polycephala,
Albizia coriaria também podem contribuir para a fertilidade
do solo. O espaçamento sugerido para árvores pequenas e
caducifólias como a Erythrina, Gliricidia e Cassia, é de 5 x
5m (400 árvores/ha), enquanto para grandes árvores decorte é 10 x 10m ou mais dependendo do tamanho da

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Poda e desbrota
adequada e no momento
apropriado.

copa (no máximo 100 árvores/ha) plantados dentro daslinhas de café. Os ramos mais baixos precisam serregularmente removidos.
Materiais doentes da planta não devem permanecer na
plantação uma vez que fornecem alimento e local dereprodução para pragas e doenças. Os ferimentos
causados por poda inadequada ou ramos quebrados são
vulneráveis às infecções fúngicas.

Existe o aplicativo móvel “HabitApp” que ajuda a fazer uma leitura instantânea dacobertura de sombra do café. Ele pode ser baixado no seguinte link: HabitApp - Apps on
Google Play25
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PRAGAS COMUNS NO CAFÉ
Principal:
Tipo de praga

Brocas e
Carunchos degrãos(Informações
Gerais)Estágios da vida da praga que ela causa dano.
Estágios da vida da praga que ela não causa dano.

Ovo

Duração (depende da espécie e das condições
ambientais)< semana

Larva

De 2 a 3 semanas

Dentro da semente/cereja/grão.

Pupa

De 4 a 9 dias

AdultoAlguns dias até 5 meses

Dentro da câmara de alimentação.
Movendo-se para encontrar
sementes/cerejas/grãos.

Estágio

Broca do café (Hypothenemus hampei)

Habitat
Inserido dentro de sementes/cerejas/grãos.

BDC deposita dentro da cereja.
Cerejas danificadas pela BDC.

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Broca do café (BDC) (Hypothenemus hampei)• A praga mais grave do café. Minúsculo (de 1,5 a 2,5 mm de comprimento) besouro preto-amarronzado cilíndrico. As fêmeas emergem das
cerejas deixadas nas árvores e no chão e cavam túneis e câmaras dentro das cerejas ao longo de 90 a 100 dias para pôr ovos. Apóschocarem, as larvas se alimentam dentro dos grãos, tornando-os inadequados. A pupação e o desenvolvimento adulto ocorrem na cereja.
Existem 10 fêmeas para cada macho.
• Sintomas: Um ou mais buracos redondos perto da ponta das cerejas com uma borda marrom ao redor dos buracos. As cerejas mostram
manchas distintas azul-esverdeado. Ao cortar a semente, se observa a fêmea ou os ovos, larvas ou jovens adultos novos.
• Dano: Perdas de cultivo de 50 a 100% das cerejas atacadas se nenhuma medida de controle for aplicada. Se o lote não for secado
adequadamente, a BDC continuará se reproduzindo no cultivo armazenado. Os danos da Broca do café encorajam infecções fúngicas
secundárias.
• Favorecido por uma altitude muito baixa (altas temperaturas), plantações abandonadas/infestadas nas proximidades, bem como cerejas
que passaram do ponto de maturação deixadas nas árvores ou no chão.
• A BDC sobrevive entre os períodos de cultivo em cerejas velhas deixadas na árvore ou no chão.
• Prevenção: Redução de sombra, se o microclima estiver muito úmido. Poda adequada e no momento correto. Sombra em excesso e/ou
poda inadequada no café causam condições desfavoráveis para os inimigos naturais da broca do café.
• Controle cultural: Começando 8 semanas após a florada, utilizar armadilhas com iscas vermelhas com vários funis com uma mistura de 1
para 1 de Etanol e metanol em doses de 0,5 ou armadilhas comerciais BROCAP 9 para atrair as fêmeas móveis antes que cavem as cerejas.
• Controle mecânico: Saneamento. Remoção de cerejas infestadas.
• Colheita e coleta de todas as cerejas de café nas árvores, bem como as cerejas caídas no chão; coletar as cerejas das áreas infestadas
quinzenalmente.
• Controle biológico: Parasitoides como Cephalonomia stephanoderis, C. hyalinipennis, Prorops nasuta ou Phymastichus coffea; fungos
Beauveria bassiana utilizando uma dose de 1010 para 1012 esporos por árvores de café (especialmente efetivo em condições úmidas).
• Controle químico: Produtos de Nim pulverizados durante os primeiros desenvolvimentos da cereja podem ser aplicados para repelir Brocasfêmeas. Uma vez que a fêmea penetrar na cereja, o controle químico já não é efetivo.
• Também Millettia pinnata sozinha ou como uma combinação com Nim funciona bem para manejar pragas• Níveis de tolerância: Amostrar mensalmente de oito semanas após a florada até a colheita (>32 semanas). Aleatoriamente selecionar 30árvores para cada 5000. Selecionar um ramo no meio de uma árvore, contendo de 30 a 100 cerejas verdes e examinar todos para buracosde Broca do Café. Calcular a porcentagem de infestação (100/total de cerejas verdes/cerejas infestadas = % infestação). Outro método deamostragem é utilizando a armadilha BROCAP.
• Começar a intervenção (como sanidade da planta) quando a taxa de infestação estiver > de 2 a 5%.

9 https://www.cirad.fr/en/innovation-expertise/products-and-services/brocap-r near processing and coffee washing areas.

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Ovo

Duração (depende da espécie edas condições ambientais)
7 diasNinfa

3 semanas

Adulto< 30 dias

Estágio

Tripes(Informações Gerais)

Habitat
Inserido no tecido da planta
Antes de transformar em adultos, as ninfas se escondem no chão sem
alimentação.
Lado de baixo das folhas.

Tripes do café (Diarthrothrips coffeae)
Minúscula (1,5mm) insetos esguios arranhando e chupando o tecido foliar, durante
infestações pesadas também chupam as cerejas. As ninfas passam seu último
estágio antes da maturação dentro do chão ao redor da árvore.
••••

Tripes do café (Diarthrothrips coffeae) no lado de baixo de uma folha.

•
•

•
•

•

Sintomas: As folhas afetadas apresentam manchas amarelas e brancas. As
folhas podem murchar e morrer.
Dano: Infestação pesada, causa morte de folhas ou queda total das folhas.
Favorecido pela seca e altas temperaturas. Uso repetido de Carbaril ou
outros inseticidas que matam ácaros predadores.
Prevenção: Manter a cobertura de sombra arbórea adequada. A cobertura
reduz as Tripes de forma considerável, especialmente durante a época deseca. Remoção de folhas infestadas.
Controle mecânico: uso de armadilhas pegajosas azuis.
Controle biológico: Ácaros predadores que se reproduzem em áreas devegetação natural são bons inimigos naturais. Também ácaros predadores
que estão comercialmente disponíveis. Eles devem ser introduzidos no inícioda época do cultivo e por muitas outras vezes ao longo da safra. Espécies de
Orius são também muito efetivas no controle de Tripes.
Controle químico: Solução de óleo para horticultura ou óleo-sabão pode serpulverizada para sufocar a praga.
Utilização de pesticidas sintéticos localmente aprovados apenas como último
recurso. Antes de realizar a aplicação de pesticidas, sempre consulte a listade Inseticidas Proibidos e em Mitigação de Risco do Anexo S7 da Norma 2020
da Rainforest Alliance.
Níveis de tolerância: 1 a 2 por folha durante a seca e de 2 a 3 durante aschuvas. Liberação de ácaros predadores ou outros métodos de controle.

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Ovo

Duração (depende da espéciee das condições ambientais)
De 1 a 3 semanas

Larva

De 3 a 4 semanas

Pupa

De 1 a 2 semanas

Adulto< 1 mês

Estágio

Mariposas eborboletas(Informações Gerais)

Danos da Mariposa do Café Prophantis
smaragdina

Habitat
Na superfície ou inserida dentro da planta hospedeira.
Alimentação do tecido da planta hospedeira.
Pendurada na planta hospedeira ou enrolada na folha. Algumas fazem apupação no solo.
Móveis e alados.

Danos do Bicho Mineiro (Leucoptera coffeella)

Danos do Bicho Mineiro (Leucoptera coffeella).

Casulo do Bicho mineiro

Bicho mineiro do café (Leucoptera spp.)Mariposa do Café (Prophantis smaragdina)• Sintomas: As minas das lagartas de Leucoptera meyricki são inicialmente separadas por uma larva maior. As lagartas de L. coffeellaproduzem uma mina comunitária, que aparece como manchas marrons irregulares na parte de cima das folhas.
• Dano: A atividade de fazer essas minas causa a redução da superfície ativa da folha, reduzindo a assimilação. As folhas atacadas
geralmente caem prematuramente.
• Favorecido por clima mais quente e mais seco.
• Prevenção: Consórcio com Artemisia sp drasticamente reduz a incidência do bicho mineiro do café. Primeiro, as folhas infestadas podem serremovidas e destruídas manualmente. Fornecer espaço suficiente para populações de insetos benéficos na forma de plantas em florada
nativas e grossas camadas de cobertura.
• Controle biológico: Vespas parasitas, que ocorrem naturalmente no campo, controlam as larvas. Ácaros predadores se alimentam dos ovos
do bicho mineiro. Fungos entomopatogênicos também podem controlar a praga.
• Controle químico: O controle químico é difícil pois o dano causado pelas lagartas está protegido dentro das folhas, isso apenas prejudicará apopulação dos insetos benéficos. Portanto, isso não é recomendado.
• Utilização de pesticidas sintéticos localmente aprovados apenas como último recurso. Antes de realizar a aplicação de pesticidas, sempre
consulte a lista de Inseticidas Proibidos e em Mitigação de Risco do Anexo S7 da Norma 2020 da Rainforest Alliance.
• Níveis de tolerância: Se as árvores são chacoalhadas vigorosamente e mais de 35 mariposas são observadas, a produtividade do café podeser afetada.
• Uma densidade de 4 minas por folha causa queda da folha e pode causar uma perda de produtividade de 50%.

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Estágio
Nematoides(Informações Gerais)

Duração (depende da espécie edas condições ambientais)

Habitat

Várias semanas

Nas raízes próximas do solo, ou dentro do córtex das raízes, geralmente
dependendo do hospedeiro.

Cisto
Ovo
Juvenil
AdultoDanos do Nematoide-das-galhas no sistemaradicular do cafeeiro.

Nematóides-das-galhas (Meloidogyne spp., Pratylenchus coffeae, Radopholus similis, Rotylenchus spp.)
Ataca as raízes, prejudicando a função radicular.
• Sintomas: Plantas atrofiadas ou com crescimento prejudicado, com folhas amareladas e frágeis.
Sistemas radiculares infectados apresentam nós característicos.
• Dano: Reduz a habilidade de da árvore de café de absorver água e nutrientes, causando uma
redução na saúde e vigor geral da árvore, também impactando na produtividade e na qualidade
dos grãos.
• A produtividade pode ser reduzida entre 20 e 25%. As plantas podem eventualmente sucumbir à
uma infestação de nematoides.
• Pode causar infecções fúngicas secundárias, como Rhizoctonia solani.
• Causado por transporte de materiais de plantios doentes entre as fazendas ou por água deenxurrada.
• Prevenção: Garantir o uso de material de plantio livre de nematoides ou que sejam resistentes ou
que tenham estoques radiculares tolerantes. O solo utilizado no viveiro para as mudas pode seraquecido, tratado com cálcio ou cinzas, ou misturado com fungos entomopatogênicos como
Beauveria bassiana, Metarhizium anisopliae ou Paecilomyces sp esterilizados antes do plantio.
• A mistura do cultivo com amendoim ou milho, pois são hospedeiros ruins para a M. incognita, tem
sido usado para manejar esse nematoide.
• A fertilidade e matéria orgânica do solo podem apoiar as árvores a parcialmente superar os feitos
dos ataques dos nematoides e, portanto, ajudam a minimizar o impacto na produtividade.
• Controle químico: é extremamente caro e não é economicamente viável em grandes áreas que
precisam ser tratadas. O melhor tratamento é durante o viveiro. Utilização de pesticidas sintéticos
localmente aprovados apenas como último recurso. Antes de realizar a aplicação de pesticidas,
sempre consulte a lista de Inseticidas Proibidos e em Mitigação de Risco do Anexo S7 da Norma
2020 da Rainforest Alliance.
• Níveis de tolerância: faixas de 100 a 5000 nematoides por Kg de solo, dependendo do gênero donematoide, e necessidades a serem determinadas por uma análise de solo.

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Estágio

Cochonilhas(Informações
Gerais)HabitatOvo

Duração (depende da espéciee das condições ambientais)< 1 mês

Ninfa< 2 meses.

Adulto♀ morre após pôr os ovos.

Cochonilhas móveis
♀ Imóvel ao longo do nervo principal das folhas, galhos, ramos, gemas. ♂
móveis alados.

Cochonilha verde (Coccus viridis) nos nervos da folha.

Protegido sob a cochonilha fêmea

Cochonilha verde em cerejas verdes.

Cochonilhas verdes adultas e ninfas em gemas e brotos.

Cochonilha verde (Coccus viridis) comum, dependendo do local pode ser uma praga menor ou grave. Mais grave em mudas transplantadas
durante os primeiros 2 anos. Imóveis e geralmente encontradas na parte de baixo da folha, perto do nervo central ou próximo das pontas de brotos
verdes. Achatadas e ovais (cerca de 3 x 2 mm). Com frequência são trazidas e espalhadas por formigas. O melado que exalam encoraja odesenvolvimento de fumagina.
• Dano: sua ação causa a redução da produtividade e baixa qualidade dos grãos de café. A alimentação excessiva causa o murchamento e
pode resultar na morte da árvore.
• Favorecido por baixa umidade e por épocas longas de seca e calor e baixo sombreamento.
• Prevenção: Utilizar apenas mudas livres de cochonilhas para o plantio. Melhorar o sombreamento para criar um microclima mais úmido.
Controlar as formigas, por exemplo, colocando fitas pegajosas ao redor das gemas. Ausência de formigas encoraja o controle pelos inimigos
naturais que ocorrem. O plantio de abóboras como cultura de cobertura encoraja as populações de insetos benéficos. Evitar alternar
hospedeiros da cochonilha.
• Controle biológico: predadores (Chilocorus melanophthalmus, Chilocorus nigrita,Azya luteipes, Chilocorus cacti); vespas parasitas(Coccophagus cowperi, Diversinervus stramineus, Metaphycus stanleyi, Metaphycus baruensis); fungos parasitas (Verticillium lecanii),
particularmente efetivos em épocas de chuva.
• Controle químico: Aplicações semanais até que as cochonilhas desapareçam de produtos de Nim, óleo de horticultura (200ml/20l de água)ou solução caseira de óleo e sabão. Extrato de pimenta misturado com água e sabão. Árvore-do-sabão indiana (Sapindus Mukoross), suas
nozes imersas em água por 48 horas produzem sabão que também possui propriedades inseticidas. Isso combinado com Nim/Pongamia
pinatta funciona bem contra cochonilhas. Utilização de pesticidas sintéticos localmente aprovados apenas como último recurso. Antes derealizar a aplicação de pesticidas, sempre consulte a lista de Inseticidas Proibidos e em Mitigação de Risco do Anexo S7 da Norma 2020 daRainforest Alliance.
• Níveis de tolerância: > 10 folhas infestadas com +1 cochonilha.

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Estágio

Insetos (Informações Gerais)

Inseto listrado do café (Habrochila
placida).

Ovo

Duração (depende da espéciee das condições ambientais)
De 5 a 26 dias

Ninfa

De 10 a 30 dias

Habitat
Inseridos no tecido da planta de uma planta hospedeira.

Jovens ninfas geralmente se agregam.
Móvel, geralmente depende do hospedeiro mas também se
AdultoVariado.
escondem em fendas nas cascas de árvore, estruturas, etc.
O Inseto listrado do café (Habrochila placida) esporadicamente é uma praga severa.
• Sintomas: A infestação geralmente começa nas folhas inferiores em um pequeno grupo de árvores decafé. Pequeno inseto alado (4 mm de comprimento). Tanto adultos como ninfas sugam as folhas. As
ninfas geralmente se alimentam em grupos do lado de baixo da folha.
• Dano: Sua alimentação causa manchas amarelas nas folhas. O lado de baixo das folhas afetadas fica
coberto com pontos pretos de seus excrementos. Ataques severos fazem com que folha fique amarela ecaia.
• Favorecido por clima quente e seco e uso imprudente de pesticidas.
• Prevenção: Evitar o uso de um amplo espectro de pesticidas para proteger os inimigos naturais. Manter afertilidade do solo através de adições regulares de esterco e fertilização, se necessário.
• Controle biológico: Mirídeos predadores (Stethoconus sp.), vespas parasitas, insetos reduvídeos, larvas deformiga-leão, joaninhas, aranhas saltadoras, Orius e ácaros predadores.
• Controle químico: Sabão inseticida, óleo para horticultura, óleo de Nim e produtos de piretrina.
• Utilização de pesticidas sintéticos localmente aprovados apenas como último recurso. Antes de realizar as
aplicações de pesticidas, sempre consulte a lista de Inseticidas Proibidos e em Mitigação de Risco do
Anexo S7 da Norma 2020 da Rainforest Alliance.
• Níveis de tolerância: Para a detecção precoce, amostre aleatoriamente os arbustos, bata nos arbustos ecolete os insetos desalojados em uma folha branca de náilon. De forma alternativa, placas verdes
pegajosas podem ser usadas para monitoramento. A intervenção é recomendada ao nível de 2 insetos
por armadilha/dia.

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A Antestia (Antestiopsis spp) é uma grande praga no Café Arábica no Leste da África.
••
Antestia (Antestiopsis spp).

•
•
•
•
•

Dano: Adultos e ninfas se alimentam dos grãos, causando seu apodrecimento através da infeção pelo
fungo Nematospora coryli. Também ataca as gemas de flores, que ficam pretas e não conseguem
frutificar. Ataca os brotos de crescimento dos ramos laterais (ortotrópicos). Os grãos secos demonstram
listras, produzindo café de má qualidade (gosto de batata) e são possíveis fontes para infecção por
fungos.
Favorecido por folhagem densa. Outro importante fator pode ser representado por plantas hospedeirasalternativas, especialmente ervas daninhas fora do controle perto das árvores do café. 10
Prevenção: poda e desbrota regulares e em momento apropriado.
Controle biológico: Vespas parasitas naturalmente ocorrentes atacam os ovos da antestia. Os ovos
atacados ficam pretos, enquanto ovos normais são brancos.
Controle químico: Pulverização de extratos de Nim.
Utilização de pesticidas sintéticos localmente aprovados apenas como último recurso. Antes de realizar a
aplicação de pesticidas, sempre consulte a lista de Inseticidas Proibidos e em Mitigação de Risco do
Anexo S7 da Norma 2020 da Rainforest Alliance.
Níveis de tolerância: > 2 insetos/árvore.

10 Para uma extensa lista de possíveis plantas hospedeiras alternativa, veja Régis Babin et al, “The Antestia Bug Complex in Africa and Asia”, in: “Invasive Stink Bugs and Related Species[…]”, Capítulo: 10, Editora: CRC Press, páginas 465-494.

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Estágio

Besouros
perfuradores(Informações
Gerais)HabitatOvo

Duração (depende da espéciee das condições ambientais)
2 semanas

Larva

0,5 a 3 anos.

Dentro das partes de madeira da planta

Pupa≅ 4 semanas

Adulto< 4 meses.

Dentro da planta hospedeiraBesouro móvel e alado em busca de plantas hospedeiras e parceiro dereprodução.

Inseridos na planta hospedeira

Broca do caule (Xylotrechus quadripes)
adulta.

Larva da broca do caule.
Broca branca do caule do café
(Monochamus leuconotus / syn. Anthores
leuconotus).

Dano no caule causado pela broca docaule.

Broca do caule (Xylotrechus quadripes)e Broca Branca do caule do Café ( Monochamus/ syn. Anthores leuconotus).
• Sintomas: Excrementos (como serragem) no chão, falhas na casca da madeira =• Dano: Folhas murchas e ramos mortos, podendo matar a árvore toda.
• Favorecido por sombreamento insuficiente, baixa altitude e mudas fracas. As árvores de café cultivadas em sombra ou em solos erodidos ou
próximas de árvores de sombra são mais propensas a serem atacadas. As árvores jovens também são mais propensas aos danos.
• Prevenção: Plantio em altitude adequada (>800m). Não plantar mudas com raízes deformadas (pião torto). Garantir boa fertilidade do solopara manter as árvores fortes. Remover e queimar árvores e ramos infestados.
• Controle biológico: Nenhum comercialmente disponível ainda. Inimigos naturais incluem pica-paus e formigas. As larvas são atacadas peloparasitoide Aprostocetus ssp. e pelo fungo Beauvaria bassiana. Óleo de cozinha usado ou gorduras animais nos buracos feitos pelas larvas
atraem formigas para se alimentarem desses óleos e gorduras e eventualmente entrarão e matarão as larvas das brocas dentro dos tuneis.
• Controle químico: considerando que estão escondidas dentro das gemas, é impossível controlá-las quimicamente. A remoção precoce dainfestação é o melhor método de controle.
• Níveis de tolerância: Os produtores devem estar alertas ao primeiro sinal das brocas. No nível de 2 a 3 brocas/árvores as intervenções sãonecessárias.

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Estágio
Cochonilhasfarinhentas(informações
gerais)Ovo

Duração (depende da espécie edas condições ambientais)
1 semana

Ninfa

De 1 a 2 meses.

Habitat
Em um caso pegajoso nas axilas das gemas ou folhas.

Cochonilhas móveis
Machos móveis com asas. As fêmeas são sésseis nos brotos, axilas da filha,
AdultoA fêmea morre após pôr os ovos.
nervos centrais ou raízes.
Cochonilha-farinhenta (Planococcus spp, Dysmicoccus ssp., Coccidella ssp., Ferrisia ssp.,
Formicoccus ssp.,Nipaecoccus ssp., Rhizoecus ssp., Puto ssp., Neochavesia ssp., etc).
Praga comum, geralmente trazida por formigas.
• Dano: Plantas infectadas perdem suas folhas. Alta infestação pode causar a morte daplanta. Infestação secundária com Fumagina é comum. Impactos negativos no aroma docafé (defeitos, acidez) e na qualidade.
• Favorecido por clima quente e seca ou alta umidade e frio. Geralmente encontrado emáreas com alto uso de inseticidas (especialmente organofosforados), uma vez que os
inimigos naturais foram erradicados. Remoção excessiva de árvores de sombra causa
concentrações.
Cochonilha-farinhenta (Planococcus spp)
• Prevenção: Controle de formigas. Impedir as formigas de subir na árvore ao colocar fitas
pegajosas ao redor do caule. Isso ajudará os inimigos naturais a controlarem as colônias
menores de cochonilha-farinhenta. Manter níveis de sombra adequados (25 a 30%). Manejar
um microclima saudável na plantação (cobertura).
• Controle biológico: O melhor controle é atingido com a joaninha Crytolaemus montrouzierque é um predador, e cujas ninfas parecem uma cochonilha-farinhenta. A taxa deliberação indicada é: 5 besouros/árvore de café Robusta infestada, 3 besouros/árvore decafé Arábica infestada.
• Na Índia, as lagartas de Spalgis epeus, que também se assemelham a cochonilha-farinhentasão seu predador mais comum. Inimigos naturais incluem diferentes espécies de vespas
parasitas e a formiga-leão.
• Controle químico: Solução caseira de óleo de Nim ou de óleo-sabão pode ser pulverizada
para sufocar a praga.
• Utilização de pesticidas sintéticos localmente aprovados apenas como último recurso. Antes
Cochonilha-farinhenta (Planococcus kenyae) afetando
de realizar a aplicação de pesticidas, sempre consulte a lista de Inseticidas Proibidos e em
as cerejas do café.
Mitigação de Risco do Anexo S7 da Norma 2020 da Rainforest Alliance.
• Níveis de tolerância: árvores infestadas podem ser tratadas individualmente por aplicações
localizadas.

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SA-G-SD-9-V1-PT

Cochonilha-da-raiz(Dysmicoccus cryptus, Planococcus ssp.)
Em alguns casos, é associada a fungos no solo (Polyporus coffeae) e formigas.
•
•
•

•
•
Cochonilha-da-raiz (Planococcus ssp.)••

Dano: Ataques nas raízes do café, sugando a seiva das raízes causando
sintomas semelhantes ao do murchamento - amarelamento e queda das
folhas e morte da árvore como um todo.
Favorecido por árvores velhas, fracas ou estressadas devido a nutrição
inadequada ou seca. Possíveis hospedeiros alternativos são outras
plantas estressadas e grama de turfa.
Prevenção: Inspecionar as raízes das mudas antes do transplante. Apenas
transplantar mudas fortes e saudáveis livres de pragas. Melhorar o estado
nutricional do solo com adições de esterco e fertilizantes. Aplicar
cobertura morta para evitar estresse na área radicular e promover ocrescimento de fungos patogênicos para a cochonilha.
Controle mecânico: Arranque e queima das árvores afetadas ou mortas.
Controle biológico: O fungo Beauveria bassiana e o nematoide
Steinernema carpocapsae são conhecidos por causar alta mortalidade
em curto prazo de cochonilha-da-raiz adultas fêmeas. Eles precisam deum certo nível de umidade no solo.
Controle químico: Piretrinos ou piretroides podem mostrar algum tipo deeficácia, mas suas aplicações devem ser evitadas se possível. Utilização
de pesticidas sintéticos localmente aprovados apenas como último
recurso. Antes de realizar a aplicação de pesticidas, sempre consulte a
lista de Inseticidas Proibidos e em Mitigação de Risco do Anexo S7 da
Norma 2020 da Rainforest Alliance.
Níveis de tolerância: Monitorar as atividades de formigas nas áreas das
gemas/raízes. Toda árvore infestada precisa ser arrancada ou tratada.

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PRAGAS COMUNS NO CAFÉA maioria das doenças no café são causadas por fungos patogênicos e menos frequentemente por bactérias e vírus. Podridão radicular,
ferrugem e a doença da cereja podem atacar árvores saudáveis sem qualquer fraqueza fisiológica em particular, enquanto a maioria dasoutras doenças de relevância econômica podem ocorrer em árvores que estão fisicamente enfraquecidas (Fabienne Ribeyre, CIRAD, 2012).

Ferrugem do café (FDC)

Ferrugem do café (Hemileia vastatrix)

Desfolha e morte causada pela Ferrugem do café.

A Ferrugem do café (Hemileia vastatrix) é uma doença fúngica que ataca principalmente as folhas mais velhas.
• Sintomas: As lesões de ferrugem são visíveis como pontos amarelos - laranjas no lado de baixo da folha que coalescem a medida que adoença progride.
• Dano: Pode levar à desfolha da plantação se não for controlado. A doença tem um efeito enfraquecedor das árvores ao longo de safras
sucessivas. Infestações severas podem causar até 75% de perdas e qualidade reduzida do café.
• É mais recorrente nas plantações de C. arabica cultivadas sob condições úmidas em altitudes baixas (1000 m.a.n.m - 1500 m.a.n.m).
• Favorecido por condições úmidas (por exemplo temperaturas noturnas > 15ºC), quando as folhas ficam úmidas por mais de 3 horas. Baixa
fertilidade do solo, baixo pH aumenta os danos.
• Prevenção: Utilização de variedades resistentes (por favor consulte seu extensionista rural local ou instituto de pesquisa para escolher acorreta).
• Otimizar o espaçamento e a poda para melhorar a aeração e evitar a retenção de umidade nas folhas por períodos prolongados, o que
encoraja o crescimento de fungos.
• Controle biológico: Os inimigos naturais da FDC são patógenos parasitas como Verticillium lecanii e Darluca ssp. Alguns insetos e ácaros
também se alimentam de esporos de ferrugem, mas nenhum deles ainda é comercialmente explorado.
• Controle químico: comummente controlado por fungicidas, que são, no entanto, muito caros. A aplicação antes e durante o início doperíodo de chuvas. O fungicida deve ser reaplicado após cada chuva. É preciso ter cuidado para aplicar o fungicida do lado de baixo das
folhas.
• Aplicações de cobre tem sido usadas em países produtores para controlar a doença.
• Níveis de tolerância: 1% das folhas infectadas é necessário ações de controle cultural e higiene. 20% de folhas infectadas é considerada
uma infecção severa.

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SA-G-SD-9-V1-PT

Traqueomicose ( Murcha vascular do cafeeiro ou CWD)

A (Fusarium xylarioides) evidente à esquerda.

As cerejas prematuramente maduras e um ramo
escurecido devido a traqueomicose.

Descoloração típica azul escuto sob o caule de uma gema
infectada por traqueomicose.

A traqueomicose , também como conhecida como ‘Murcha vascular do cafeeiro’ ou ‘CWD’,
Afeta café Arábica e Robusta, bem como as espécies selvagens. É um murchamento vascular causado pelo fungo Fusarium xylarioides.
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Sintomas: Queda das folhas é o primeiro sinal de traqueomicose. As folhas ficam flácidas, amarelas e então se secam e caem, deixando asárvores afetadas completamente sem folhas. Um sintoma único para identificar a traqueomicose é a descoloração azul escura na madeira
diretamente abaixo da casca do caule em direção à base da gema.
Dano: A ‘morte’ geralmente começa de um lado da árvore, mas rapidamente se espalha para toda a árvore. Grãos imaturos amadurecem
precocemente, deixando um impacto negativo no aroma e com amargor.
Favorecido por pH baixo, acúmulo de água e ferimentos nas raízes.
Prevenção: O material de plantio não deve ser obtido de áreas com infecções de traqueomicose conhecidas. Apenas utilizar sementes emateriais de corte livres de doenças.
As árvores infectadas devem ser arrancadas e queimadas imediatamente. Inspeções regulares ajudam na detecção precoce da doença eauxiliam a conter a sua disseminação. As áreas afetadas devem ser retiradas da produção do café por vários anos.
Controle químico: improvável de ser efetivo uma vez que o patógeno vive dentro do solo ou dentro da planta, dificultando ser alvo até defungicidas sistêmicos.
Níveis de tolerância: É necessária ação imediata se sintomas forem observados.

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Doença da Cereja do Café (CBD)

A Doença da Cereja do Café (Colletotrichum kahawae).

Lesões típicas e esporulações das cerejas verdes afetadas por CBD.

Doença da Cereja do Café (CBD)
Que afeta apenas café arábica. é causada pelo fungo Colletotrichum kahawae e é endêmica na África.
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Sintomas: As cerejas em qualquer estágio ficam pretas, secas, enrugadas e degradadas, com a pele dura. As cerejas são mais resistentes
durante o primeiro mês ou quando estão totalmente maduras.
Danos: cerejas mumificadas, que podem causar perda considerável de produtividade de até 75% se não controladas adequadamente.
Favorecida por condições úmidas ou altas chuvas e temperaturas em cerca de 22ºC. Prevalece em áreas com padrões de precipitação
bimodais. Plantações com aplicações regulares de cobre são mais susceptíveis a CBD.
Prevenção: Uso de variedades resistentes como Ruiru 11, Híbrido de Timor, Rume Sudan, 45 K7 e vários Catimores. Plantio com maior
espaçamento e poda adequada para prevenir umidade prolongada e alta umidade relativa seguido de períodos de chuva. Pela mesmarazão, evite sombras muito densas. Todas as cerejas devem ser removidas ao final da safra uma vez que agem como fonte de inóculo para
ao novo cultivo.
Controle biológico: Fungos e bactérias de ocorrência natural agem como antagonistas para a CBD, mas nenhum ainda estácomercialmente disponível.
Controle químico: Fungicidas. Aplicações insuficientes são mais prejudiciais que nenhuma aplicação.
Níveis de tolerância: Não há informação disponível uma vez que a efetividade dos fungicidas ainda não foi provada.

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Mancha Olho de Galo ( Mancha americana)Manchas de Olho de Galo (Mycena citricolor) nas folhas e nas cerejas verdes.

O Olho de Galo (Mycena citricolor) é uma doença fúngica nos neotrópicos.
• Sintomas: pontos secos e marrons em todas as partes acima do chão da planta.
• Dano: podem causar desfolha significativa, resultando na redução do crescimento, na queda de cerejas e na subsequente perda deprodutividade de até 20% bem como na redução de qualidade.
• Favorecido por café cultivado em alta altitude, condições úmidas, muita nebulosidade (baixa radiação) e altos níveis de sombreamento.
Também promovida por condições climáticas erráticas e dispersada por falta de higiene.
• Prevenção: Ajustar os níveis de sombra para reduzir a umidade. Higiene é crucial no controle dessa doença. Remover todas as fontes deinóculos.
• Controle biológico: Pesquisa com relação as bactérias antagônicas parece ter sucesso, mas ainda não foi comercializada.
• Controle químico: Fungicidas como a mistura de Bordeaux e outros fungicidas de cobre, ou em casos severos Triazois. Aplicações dehidróxido de cálcio se mostraram efetivas para supressão dos sintomas. (Rao e Tewari, 1988). Utilização de pesticidas sintéticos localmente
aprovados apenas como último recurso. Antes de realizar a aplicação de pesticidas, sempre consulte a lista de Inseticidas Proibidos e em
Mitigação de Risco do Anexo S7 da Norma 2020 da Rainforest Alliance.
• Níveis de tolerância: Medidas de higiene e ajuste de sombreamento devem começar na ocorrência dos primeiros sintomas. Níveis detolerância para controle químico: 15 lesões/folha.

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Cercosporiose ( Mancha de olho pardo)

Cercosporiose (Mycosphaerella coffeicola e Cercospora
coffeicola) nas folhas.

Cercosporiose em mudas.

Cercosporiose causada por Cercospora coffeicola

Cercosporiose (Mycosphaerella coffeicola e Cercospora coffeicola).
• Dano: As cerejas infectadas murcham e amadurecem antes dos grãos estarem maduros, resultando em sabores desagradáveis.
Frequentemente outros fungos invadem as cerejas seguindo as infecções da Cercospora.
• Favorecida por condições de frio e umidade crescentes acima de 600 m.a.n.m, sob baixo sombreamento, alta umidade e chuva, ou
temperaturas quentes e seca após a florada. Geralmente ocorre em áreas mal nutridas (especialmente deficiências de nitrogênio e depotássio) ou sombreamento insuficiente.
• Prevenção: Melhorar a fertilidade do solo e manejo do sombreamento. Melhoria da aeração através do espaçamento e poda adequados
que permitam suficiente movimentação do ar. Evitar acúmulo da água. Controlar a competição com ervas daninhas através do mulching e
culturas de cobertura adequadas. Remover materiais podados das plantas infectadas, uma vez que os esporos remanescentes na
plantação infectarão mais plantas. Aumentar a densidade de sombreamento.
• Controle químico: 3 aplicações/mês de produtos de cobre começando na florada. Cuidado: usar cobre em excesso pode causar
toxicidade de cobre no solo e, também, pode ser prejudicial para insetos benéficos que controlam as cochonilhas. Aplicações mensais decaptafol (0,3% de i.a) são recomendadas para uso em viveiros. Utilização de pesticidas sintéticos localmente aprovados apenas como último
recurso. Antes de realizar a aplicação de pesticidas, sempre consulte a lista de Inseticidas Proibidos e em Mitigação de Risco do Anexo S7 da
Norma 2020 da Rainforest Alliance.
• Níveis de tolerância: De 20 a 35% de plantas atacadas.

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Mancha aureolada

Sintomas de mancha aureolada (Pseudomonas syringae pv. garcae) nas folhas do café.

Sintomas de mancha aureolada em galhos e folhas.

Mancha aureolada (Pseudomonas syringae pv. garcae) nas folhas do café.
• Sintomas: As folhas secam, se enrolam para dentro mas não caem. Os galhos morrem uma vez que a infecção se estende em direção agema terminal.
• Dano: As flores e brotos murcham, escurecem e toda a produção pode ser perdida.
• Favorecido por clima frio e úmido, ferimentos na planta e altas taxas de fertilização de nitrogênio.
• Prevenção: Não usar mudas ou material de plantio de áreas propensas à mancha aureolada. Evitar o ferimento da árvore durante a poda.
Dividir as aplicações de N ou aplicar esterco animal ao invés de fertilizantes nitrogenados. Cortar e queimar os galhos e ramos infectados.
Desbrota frequente. Evitar a poda quando as árvores estão úmidas. Utilizar variedades resistentes.
• Controle químico: Produtos com base em cobre são mais efetivos, mas atenção deve ser dada à toxicidade de cobre acumulado no solo.
• Níveis de tolerância: Medidas de higiene devem ser imediatamente tomadas em cada árvore infestada.
Podridão radicularPodridão de raiz (Phytium spp. ou Rhizoctonia solani)
É uma doença fúngica que afeta as mudas no viveiro.
••••
Podridão de raiz (Phytium spp)••

Sintomas: Fragmentos das novas mudas morrem rapidamente, suas gemas ficam escuras e
apodrecem.
Dano: Perda econômica devido a falha da muda.
Favorecido por solo úmido, excesso de sombra e altas densidades de plantas que impedem omovimento suficiente do ar.
Prevenção: Garantir que as condições do substrato da da muda permita a drenagem suficiente dosolo. Espaçamento entre as mudas de 2,5 x 10cm. Não reusar solo velho uma vez que a doença é
originada no solo e pode ser transportada.
Controle químico: Aplicações sistêmicas com Benomil são possíveis, mas não recomendadas. Melhoria
das condições de drenagem geralmente é suficiente.
Níveis de tolerância: nenhum, uma vez que a doença mata e os tratamentos são apenas preventivos.

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Mancha de Phoma do cafeeiro
Mancha de Phoma do cafeeiro(Phoma costarricensis) é uma doença fúngica conhecida na Costa Rica como “derretimento” ou “
queima”. Se tornou mais comum devido às mudanças climáticas erráticas.
•

Mancha de Phoma do cafeeiro
Danos nas folhas de Phoma costarricensis•••

Favorecido por áreas de cultivo em cerca de 1400 m.a.n.m ou em condições de altacondensação ou chuva frequente, ventos moderados e média de temperaturas de cerca de
20ºC, que faz com que as folhas permaneçam molhadas por longos períodos. Baixa fertilidade
do solo aumenta os danos.
Prevenção: Uso de quebra-ventos.
Níveis de tolerância:
Avaliação precisa da severidade da doença é difícil e os produtores devem consultar um
especialista local.

Danos da phoma em cerejas de café.

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MAIS INFORMAÇÕES
Aplicativo da Rainforest Alliance sobre pesticidas e suas alternativas:
https://play.google.com/store/apps/details?id=org.ipmcoalition.pesticidealternatives
https://apps.apple.com/app/id1461460997#?platform=iphone
CABI e Infonet Biovision ambas publicaram listas compreensivas de problemas no café, que
podem ser encontradas aqui: https://www.plantwise.org/FullTextPDF/2018/20187800554.pdf
e aqui: https://www.infonet-biovision.org/PlantHealth/Crops/Coffee#simple-table-ofcontents-3
A KALRO publicou um manual de produção do café que destaca as doenças e pragas docafé no Leste da África. Pode ser encontrada aqui:
http://www.kalro.org/sites/default/files/Coffee_Propagation_Production_Manual_13_Feb_2019_ed_LW.pdf
Um artigo muito informativo de C. Staver, et al. Sobre manejo de sombras em plantações decafé para controlar pragas e doenças pode ser encontrado
aqui:https://sites.evergreen.edu/terroir/wp-content/uploads/sites/134/2015/10/Designingpest-suppresive-multistrata-systems_-coffee.pdf
Créditos das fotos:
AVELINO, Jacques (CIRAD/IICA-PROMECAFE/CATIE)LADERACH, Peter (CIAT)COLLET, Laure (CIAT)BARQUERO, Miguel (ICAFE)CILAS, Christian (CIRAD)
Infonet-biovision
http://www.fao.org/3/ae939e/ae939e0b.htm
CABI - Plantwise Knowledge Bank
Georg Goergen/IITA Insect Museum, Cotonou, BeninKohler F, Pellegrin F, Jackson G, McKenzie E (1997) Diseases of cultivated crops in Pacific Island countries. South Pacific Commission. Pirie Printers Pty Limited,
Canberra, Austrália.
Jonathan D. Eisenback, Virginia Polytechnic Institute and State University, Bugwood.org
https://www.molidoyservido.com
A. A. Seif, icipe
Luis Miguel Constantino, et.al., Natural enemies of the coffee leaf miner Leucoptera coffeella (Lepidoptera: Lyonetiidae), Jun 2018
Noah Phiri, CABI
Mike Rutherford, CABI
Julie Flood, CABI
Nelson, S.C. Cercospora Leaf Spot and Berry Blotch of Coffee. Plant Disease. PD-41, 2008.
Casa Brasil Coffees, 415 E. St. Elmo Rd Ste 4A Austin, TX 78745
Thais D. M. Pongeluppi, Phoma no cafeeiro - diversos fungos em uma mesma planta, Nov 2018, BASFANACAFE, 2014
Cody Lance, UK
Julio Guevara, Perfect Daily Grind Ltd, UK
Grahame Jackson, CABI (2015)
Jennifer Hashim, UCCE Kern Co. and Steven J. Castle, USDA-ARS, University of California
Flávia Patrício, Agrolink
Uganda Training Materials for Coffee Production, First edition, 2014
Gabisa Giddisa Hinkosa, Alemu Lencho, Thangavel Selvaraj, Arvind B Chavhan, Kasahun Sadessa

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ORIENTAÇÕES ESPECÍFICAS PARA CHÁ
Aviso legal
Essa orientação específica para cultivo de MIP não visa cobrir todas as pragas possíveis por
cultivos. A intenção é apresentar as pragas/doenças mais comuns que afetam certos
cultivos em várias regiões ao redor do mundo.

Informações Gerais
Recomendações para Chá (Camellia sinensis var. sinensis e C. sinensis var. Assamica).

Escolha de um local
adequado para o cultivo.

Altitude

Condiçõe
s decultivo

Declividade

Temperatura
Chuva
UmidadeEscolha de variedades decultivo saudáveis
adequadas para o local

Medidas de controle deerosãoO chá precisa de um clima moderadamente quente eúmido, que é encontrado sob condições tropicais mais frias.
O chá é uma planta florestal e é melhor cultivado em solos
florestais limpos mas também vai bem em qualquer solo
fértil, especialmente em solos vermelhos já que pode tolerar
altos níveis de alumínio. O solo deve ter drenagem livre com
uma profundidade de cerca de 1 a 1,5m, no entanto, que
forneçae umidade suficiente ao longo do ano. A
proximidade da floresta original ajuda a fornecer omicroclima ideal, e também proteção contra os ventos. No
ambiente agroecológico correto, não é difícil cultivar chá
sem o uso de pesticidas. A pressão de pragas e doenças é
um sinal certo de condições inadequadas de cultivo emanejo equivocado.
800 - 2000 m.a.n.m.
Alguma declividade é necessária para permitir uma boa
drenagem.
15 - 25° = muito adequado.
Declividade suave (>5 - 7°) = altamente adequado.
Declividade muito acentuada (>35 º) inadequado. Emáreas relativamente planas é preciso haver drenagem
adequada para drenar a água do subsolo.
16 a 30ºC com uma média de temperatura de 21 - 26ºC
durante a época de produção.
1250-2000 mm, bem distribuídas por 8 - 9 meses por ano.
~ 80% ao longo do ano.
Preferência deve ser dada as variedades adaptadas às
condições climáticas do local. C. sinensis, embora tenhabaixa produtividade, é conhecida por ser mais resistentetanto ao frio quanto a seca. Para o Quênia NGC15, NGC17,
NGC19, C235, C357 se mostraram altamente resistentes a
insetos considerados pragas.
Também é recomendado que um único clone não exceda
10% da plantação, ao invés disso um conjunto de diferentes
clones deve ser plantado.
Plantio em contorno com um ou dois transectos. Produção
profunda ou roçada intensiva deve ser evitada pois isso
danificará as raízes dos arbustos de chá. As ervas daninhas
precisam ser controladas, e por isso cobertura do solo deve
ser plantada entre as linhas como: Eragrostis curvula,
Tephrosia candida, Crotalaria anagyroides ou Crotolaria
usaramoensis. Níveis adequados de sombra também
regulam a temperatura das folhas, adicionam matéria
orgânica aos solos, trabalham como quebra-ventos,
aumentam a biodiversidade, atraem pássaros e suprimem
ervas daninhas.

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Manutenção da saúde e
fertilidade do solo

Manutenção de níveis
adequados de matéria
orgânica no solo (MOS)

Manutenção de níveis
adequados de sombra

Plantas enfraquecidas não apenas produzem um cultivo
pobre mas também são mais susceptíveis aos ataques depragas e doenças. Idealmente, os solos são analisados uma
vez por ano e os tipos e quantidades de nutrientes
recomendados são aplicados. Nutrição equilibrada (NPK)com base em análises de solo, produtividades do cultivo e
localização geográfica é recomendada.
Aplicações de esterco orgânico juntamente com
aplicações de fertilizantes inorgânicos aumentam a taxa deabsorção de nutrientes. Faixa de pH (H20) recomendada:
4,5 - 5,0(Para mais detalhes, veja o Documento de Orientação
para Solo.)A MOS adequada varia em relação as geografias ealtitudes: onde 1,2 a 3% pode ser o ideal para altitudes
baixas e de 3 a 6% para elevações mais altas. A MOS auxilia
a sustentar os níveis de microrganismos benéficos,
garantindo uma boa drenagem (chá não tolera
alagamentos), bem como níveis adequados de retenção
de água. Para aumentar e manter níveis adequados de
MOS, adições frequentes de esterco animal ou composto
são necessárias, bem como a cobertura do solo (incluindo
podas de chá deixadas no local). Resíduos de folhas deárvores de sombra também fornecem quantias substanciais
de MOS.
Níveis de sombreamento de 20% a 50% são recomendados.
A sombra é necessária para proteger os arbustos de chá doestresse pela seca e sobre exposição ao sol, o que causa oamarelamento e a morte. Sombra demais, no entanto,
reduz a produção e pode criar um microclima muito úmido,o que pode aumentar as doenças fúngicas. Portanto, onível de sombreamento deve ser manejado com atenção.
Por outro lado, a dispersão de patógenos pelos respingos
da chuva e pelo vento são minimizados se a força do ventoe da chuva for reduzida pelas árvores de sombra. Árvoresde sombra leguminosas como rythrina subumbrans, Erythrina
lithosperma, Gliricidia sepium, Cassia siamea, or Albizia
polycephala, Albizia coriaria, Albizzia chinensis, Albizzia
Procers, Albizzia odrotissima, Albizzia chinensis, Acacia
lenticularis, Dalbergia sericea estabelecidas em 7 x 10m
também contribuem para a fertilidade do solo. O
espaçamento sugerido para grandes árvores de cortecomo Seixo, Cipreste e Pinheiro é 10-12 x 10-12m dentro daslinhas de chá. Para quebra-ventos banana ou Hakea salignpodem ser utilizados. Nas planícies onde chá novo éplantado, é recomendado ter uma árvore de sombra de
crescimento rápido temporária plantada entre as espécies
de sombra permanentes.

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PRAGAS COMUNS NO CHÁ
Tipo de praga

Mosquito do Chá(Informações Gerais)

Helopeltis antonii/theivora

Dano em uma folha causado pelo
Mosquito do chá.

Estágios da vida da praga que ela causa dano.
Estágios da vida da praga que ela não causa dano.
EstágioDuração (depende da espécie edas condições ambientais)

HabitatOvo

De 5 a 26 dias

Inseridos no tecido da planta de uma planta hospedeira.

Ninfa

De 10 a 30 dias

Jovens ninfas geralmente se agregam.

AdultoVariado.

Móvel, geralmente depende do hospedeiro mas também seescondem em fendas nas cascas de árvore, estruturas, etc.).

Mosquito do Chá (Helopeltis antonii/theivora)• Plantas hospedeiras alternativas Ervas daninhas como Mikania cordata/micrantha, Bidens biternata, Emilliasp., Polygonum chinese e Lantana camara. Caju, nim, moringa e goiaba.
• Sintomas: Os insetos adultos e ninfas com pelos alaranjados sugam a seiva das folhas frescas e brotos macios
causando pontos de necrose marrom-avermelhados.
• Dano: as folhas se enrolam, secam e morrem.
• Ativo durante manhã e no final da noite e durante o dia em dias nublados.
• Favorecido pela remoção incompleta de talos/quebra de talos durante a coleta. O Mosquito do Chá
coloca seus ovos preferivelmente nessas pontas quebradas no final dos brotos coletados. Temperaturas >15ºC• Prevenção: Coletar e destruir insetos e partes danificadas das plantas durante os estágios iniciais da melhor
maneira possível. Suprimir ervas daninhas através de uma boa cobertura. Evitar plantar variedades chinesas
e materiais clonais como TV-1, P-126A em áreas propensas ao mosquito do chá.
• Controle biológico: Parasitoides: Vespa-fada; Erythmelus helopeltidis. Predadores: Chrysoperla zastrowii
sillemi/carnea, Mallada sp, Aranha-lince (Oxyopes sheweta) predadora, reduvídeos, louva-deus. Patógenos:
Nematóides (Hexamermis ssp.), fungo Beauveria bassiana.
• Controle mecânico: Esquifaros fragmentos severamente afetados. Remover todas as folhas acima da mesa
de coleta e todas as folhas afetadas visíveis. Coletar em turnos curtos.
• Controle químico: Pulverizações de espinosade, diatomito e piretro durante as primeiras horas da manhã;Pulverizar 5% de extrato de clorofórmio de Pongamia pinnata. Utilização de pesticidas sintéticos localmente
aprovados apenas como último recurso. Antes de realizar a aplicação de pesticidas, sempre consulte a listade Inseticidas Proibidos e em Mitigação de Risco do Anexo S7 da Norma 2020 da Rainforest Alliance.
• Níveis de tolerância: 5% de infestação ou 8 insetos adultos/2m².

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Ovo

Duração (depende da espéciee das condições ambientais)
2 semanas

Larva

0,5 a 3 anos.

Dentro das partes de madeira da planta

Pupa≅ 4 semanas

Adulto< 4 meses.

Dentro da planta hospedeiraBesouro móvel e alado em busca de plantas hospedeiras e parceiro
de reprodução.

Estágio

Besouros perfuradores(Informações Gerais)

Broca de Broto (Xyleborus
fornicatus)

Habitat
Inseridos na planta hospedeira.

Broca de Broto (Xyleborus fornicatus)• Sintomas: Os típicos buracos da broca nas raízes e na parte inferior do tronco, excrementos salientes nos
buracos.
• Dano: Os tuneis das larvas na parte de madeira dos arbustos. Perdas de cultivo de 18 a 40%.
• Um problema sério em áreas de baixa e média elevação em solos com drenagem ruim. Plantas hospedeiras
fracas.
• Prevenção: Evitar acúmulo da água. Remover ramos afetados. Aplicar nitrogênio e potássio a uma taxa de 1:2.
Colocar 400 gemas murchas de Montanoa bipinnatifida por ha para atrair as brocas do Broto adultas e queimar
regularmente. Evitar material de plantio susceptível como os clones TRI2024 e TRI2025 nas áreas propensas a
Broca de Broto.
• Controle biológico: Pulverizar Beauveria bassiana em pó molhável.
• Controle químico: Cobrir a gema principal com pasta de Carbaril. Utilização de pesticidas sintéticos localmente
aprovados apenas como último recurso. Antes de realizar a aplicação de pesticidas, sempre consulte a lista deInseticidas Proibidos e em Mitigação de Risco do Anexo S7 da Norma 2020 da Rainforest Alliance.
• Níveis de tolerância: 15% de infestação.

Típico dano da Broca de Brotona gema.

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EstágioÁcaros (Informações
Gerais)Ovo

Duração (depende da espéciee das condições ambientais)
De 4 a 5 dias

Habitat

Lado de baixo das folhas.
Antes de transformar em adultos, as ninfas se escondem no chão sem
Ninfa
De 5 a 6 diasalimentação.
AdultoDe 2 a 4 semanas
Lado de baixo das folhas.
Ácaro vermelho (Oligonychus coffeae) Ácaro da Leprose (Brevipalpusphoenicis ), Ácaro roxo (Calacarus carinatus),Ácaro rosa (Acaphylla theae), e Ácaro amarelo (Polyphagota rosnemus latus).
•
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•
•
•

Sintomas: Os danos geralmente são visíveis ao longo da nervura central, se espalhando ao longo das veias. As
larvas ficam acinzentadas ou amarronzadas quebradiças.
Dano: As ninfas e adultas perfuram o tecido da folha e sugam a seiva, de forma que a planta perca vigor e as
folhas infestadas não sejam mais consumíveis. Infestação severa pode levar a morte de folhas e desfolha.
Favorecido pela seca e atraso na colheita ou excesso de colheita. Ausência de sombra. Temperaturas acimade 25ºC, baixa umidade; elevações abaixo de 1500 m.a.n.m.
Prevenção: Melhorar o microclima e os níveis de matéria orgânica no solo para evitar estresse por seca.
Aumentar o nível de sombreamento.
Controle mecânico: Remover todas as partes infestadas.
Controle biológico: Ácaros predadores (Ambleyseius ssp., Agistemus ssp, Zetzellia ssp., etc.), tripes predadoras(Oligota spp.), Orius ssp, Wollastionella testudo, Sirfídeos, Mirídeos, Chrysoperla carnea. Fungos patogênicos:
Penicillium ssp., Aspergillus ssp., Cladosporium ssp., Botryosporium., Verticillium lecanii.
Controle químico: Pulverizar óleo de horticultura ou solução caseira de óleo e sabão (óleo branco).
Níveis de tolerância: 50% de folhas infestadas ou 5 ácaros adultos ou 25 ovos por folha.

Danos do Ácaro da Leprose(Brevipalpus phoenicis) nas folhas
de chá

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Ovo

Duração (depende da espéciee das condições ambientais)
7 diasNinfa

3 semanas

Estágio

Tripes (Informações
Gerais)Danos causados pela Tripes(Scirtothrips bispinosus)

Habitat
Inserido no tecido da planta
Antes de transformar em adultos, as ninfas se escondem no chão sem
alimentação.
Lado de baixo das folhas.

Adulto< 30 dias
Tripes (Scirtothrips bispinosus)• Sintomas: A superfície da folha fica desnivelada, curva e manchada, exibindo linhas paralelas prateadas dealimentação em um dos lados do nervo central.
• Dano: Ninfas jovens e adultas preferem sugar a seiva da folha jovem e as gemas da planta perdem vigor,
levando ao seu murchamento. As folhas infestadas se tornam distorcidas, enrugadas e não utilizáveis. Em seu
nível de tolerância as Tripes podem causar até 13% de perda de produtividade. Vetor de vírus.
• Favorecido por falta de sombra, condições quentes e úmidas; em algumas áreas de produção, o tempo
seco é propício ao seu crescimento.
• Aplicações frequentes de cobre.
• Prevenção: Manter o nível ideal de sombreamento.
• Controle biológico: Anthocoris e Orius spp., Wollastoniella testudo , Tripes predadoras (Aeolothrips intermedius,
Mymarothrips garuda), ácaros predadores da subfamília Stigmaeidae. Chrysoperla carnea, Mallada ssp.,louva-deus, joaninhas, Sirfídeos, aranhas, etc. Patógenos: Steinernema ssp., Verticillium lecanii, Beauveria
bassiana, Metarhizium anisopliae, Paecilomyces fumerosus• Controle químico: Óleo de horticultura ou um inseticida prescrito. Utilização de pesticidas sintéticos
localmente aprovados apenas como último recurso. Antes de realizar a aplicação de pesticidas, sempre
consulte a lista de Inseticidas Proibidos e em Mitigação de Risco do Anexo S7 da Norma 2020 da Rainforest
Alliance.
• Níveis de tolerância: 3 Tripes por broto.

Danos nas linhas da folha paralelasao nervo central causados pela
Tripes.

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Ovo

Duração (depende daespécie e das condições
ambientais)
De 1 a 3 semanas

Larva

De 3 a 4 semanas

Pupa

De 1 a 2 semanas

Adulto< 1 mês

Estágio

Mariposas e borboletas(Informações Gerais)saqueadora de chá (Biston suppressaria)

Habitat
Na superfície ou inserida dentro da planta hospedeira.
Alimentação do tecido da planta hospedeira.
Pendurada na planta hospedeira ou enrolada na folha.
Algumas fazem a pupação no solo.
Móveis e alados.

Lagartas da Mariposa Tussock (Euproctis
pseudoconspersa)

Lagartas em cachoda mariposa (Andraca
bipunctata)

Lagartas de borboletas e mariposas Lepidopteras, como as porta-caixas (Coleophora scaleuta ou C. vigilis), lagartas em cacho (Andraca
bipunctata), Mariposa Tussock (Euproctis pseudoconspersa), saqueador de chá (Biston suppressaria) ou Endoclita ssp.
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Sintomas: as lagartas aparecem em massas agregadas e desfolham o arbusto.
Dano: 2 gerações por ano podem destruir vários arbustos de plantações de chá.
Favorecido pelo controle químico da Broca do Broto que também erradica os parasitoides das lagartas.
Prevenção: Aumento da vigilância e do monitoramento cada vez que uma nova geração cresce e reag precocemente, antes que várias
gerações se desenvolvam.
Controle mecânico: Pequenas populações podem ser removidas/esmagadas manualmente se detectadas precocemente.
Controle biológico: Larvas parasitoides: Taquinídeos, Cylindromyia sp., Cotesia ruficrus, vespas braconídeas (Macrocentrus homonae);
Patógeno: Bacillus thuringensis. Euproctis pseudoconspersa NPV (EupsNPV) é um patogênico para a Mariposa Tussock do chá.
Controle químico: Aplicações de óleo de nim.
Níveis de tolerância: 15% de folhas danificadas ou de 4 a 5 lagartas por plantas.

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Lagartas de Mariposas enrola-folhas como Caloptilia theivora, Adoxophyes honmai ou Homona
agnânima.
••••

Folhas de chá enroladas por lagartas de Caloptilia
theivora, Adoxophyes honmai ou Homona agnânima.

•••

Sintomas: As larvas se enrolam nas folhas e se alimentam por dentro. Algumas também
fazem a pupação dentro de um ninho de folha enrolada.
Dano: Causam danos esporádicos.
Favorecido pelo controle químico da Broca doBroto que também erradica os parasitoides
das lagartas.
Prevenção: 5 armadilhas de feromônios/ha, suspensas a 30cm acima da copa do cultivo; aisca é substituída uma ou duas vezes por mês, dependendo das condições climáticas.
Controle biológico: Vespas braconídeas (Macrocentrus homonae); Bacillus thuringensis.
Controle químico: Não recomendado.
Níveis de tolerância: % folhas enroladas por arbusto ou 8 mariposas por dia/armadilha.

Broca vermelha (Zeuzera coffeae) (larvas).
•
•
•
•
•
Larva de Broca vermelha (Zeuzera coffeae) dentro do
ramo.

•
•
•

Sintomas: A lagarta cava as gemas e ramos que então demonstram murchamento.
Excrementos se acumulam na base da planta.
Dano: Em casos avançados, o ramo se seca.
Favorecido por: alta incidência de luz.
Prevenção: Sombra suficiente.
Controle mecânico: Corte e queima de ramos afetados, provado como o controle mais
efetivo.
Controle biológico: Fungus (Beauveria bassiana) or Gibberella fujikuroi; vespas braconídeas
(Amyosoma zeuzerae); Parasitóides: Bracon zeuzerae, Isosturmia chatterjeeana, Myosoma
chinensis, Senometopia kockiana.
Controle químico: Pulverizações de óleo de nim ou calda sulfocálcica.
Níveis de tolerância: 15 buracos por 45 arbustos.

Mariposa adulta da Broca vermelha (Zeuzera coffeae).

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Estágio

Afídeos(Informações Gerais)

Duração (depende da espéciee das condições ambientais)

Habitat10 – 14 dias de ciclo de vida

Lado de baixo das folhas, brotos jovens, ramos verdes.

Ovo
Ninfa
AdultoPulgão do chá (Toxoptera auranti).
••••

Infestação de pulgão do chá(Toxoptera auranti).

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•
•

Sintomas: Insetos pequenos, escuros e redondos agregados em brotos jovens e do lado de baixo das folhas.
Geralmente trazidas por formigas.
Dano: Ninfas e adultos perfuram o tecido da folha e sugam a seiva, a planta fica atrofiada. Infestações
pesadas podem causar o amarelamento de folhas e brotos e sua distorção/atrofia. Tipicamente causa
infecções secundárias com a Fumagina. Vetor de vírus.
Favorecido por plantas estressadas, baixa fertilidade do solo, seca. Falta de predadores naturais.
Prevenção: verificar por afídeos nos transplantes antes do plantio, usar variedades tolerantes, se disponíveis (porexemplo a /NTRI 101 de Rupi, Aa /NTRI 117 de Chuye e Bb /NTRI 470, Bd/NTRI 180 de Qi-men).
Controle mecânico: Se a população de afídeos estiver limitada a algumas folhas ou brotos, então a infestação
pode ser podada para controle; as plantas podem receber um forte jato de água para retirar os afídeos das
plantas.
Controle biológico: Formiga-leão, joaninha, moscas das galhas, insetos predadores, sirfídeos, vespas parasitas,
bem como os fungos Metarhizium anisopliae ou Entomophtorales ssp.
Controle químico: Pulverizar óleo com sabão ou óleo de nim.
Níveis de tolerância: 20% de infestação.

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Gafanhotos e outros
Insetos Saltadores(Informações Gerais)

Ovo

Duração (depende da espéciee das condições ambientais)
7 - 70 dias

Ninfa

< 2 meses.

Adulto< 5 meses.

Estágio

HabitatGafanhoto: solo; Grilos: nervo central das folhas.
Móveis, se alimentando enquanto estão alojados nas plantas
principalmente à noite.

Cigarrinha verde (Empoasca flavescens)
Especialmente as ninfas causam danos ao sugar a seiva. Vetor de vírus.
••Cigarrinha verde (Empoasca
flavescens)

•
•
•
•
•
•

Sintomas: Chamadas de “pragas de borda”: As margens da folha se enrolam para baixo, ficando curvadas eamarronzadas, e secam. Afeta especialmente os tecidos das novas gemas e brotos do chá, particularmente ointernódio.
Dano: Gafanhotos sugam seiva. Sua saliva causa danos na folha. Reduz a fotossíntese levando a atrofia do
crescimento.
Favorecido por altas temperaturas e padrões de seca/chuva invertidos.
Prevenção: Chá moderadamente sombreado mostra menos problemas com gafanhotos, no entanto, muito
sombreamento pode aumentar sua incidência. A cobertura do solo melhora o microclima e também reduz as
populações de gafanhotos.
Controle mecânico: Uso de luzes/armadilhas pegajosas amarelas.
Controle biológico: Joaninhas, formiga-leão, louva-deus, donzelinhas. Pulverizar Verticillium lecanii (2 g/l).
Controle químico: Pulverização de Piretro, óleo de nim ou uma mistura de óleos mentol e cânfora.
Níveis de tolerância: 50% (50 cigarrinhas/100 folhas).

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Estágio
Nematoides(Informações Gerais)

Duração (depende da espéciee das condições ambientais)

Habitat

Várias semanas

Nas raízes próximas do solo, ou dentro do córtex das raízes, geralmente
dependendo do hospedeiro.

Cisto
Ovo
Juvenil
AdultoNematóides como (Meloidogyne ssp.).
••

Danos nas raízes causados por
nematoides.

•••

Sintomas: Raízes infestadas desenvolvem caroços e ramificam profusamente.
Dano: As plantas severamente infectadas demonstram um sistema radicular reduzido, que seriamente prejudica
sua função de absorção de água e nutrientes. As plantas murcham durante os períodos quentes e com
frequência ficam atrofiadas. A infecção por nematoides predispõe as plantas a patógenos radiculares fúngicose bacterianos.
Favorecido por temperatura do solo entre 21 e 26ºC e solos leves.
Prevenção: Nunca reutilizar solo de envaze ou esterilizar com alta temperatura o solo do viveiro antes do uso.
Níveis de tolerância: > 6 – 7 nematoides por 10g de solo analisado.

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SA-G-SD-9-V1-PT

DOENÇAS COMUNS NO CHÁ
A maioria das doenças no chá são causadas por fungos patogênicos e menos frequentemente por bactérias e vírus. A maioria das doenças
no chá pode ser prevenida ou manejada com boas práticas agrícolas e manejo da plantação.
Queima da bolha
Queima da bolha (Exobasidium vexans)
Doença fúngica.
•

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•
•
•
Queima da bolha (Exobasidium
vexans)••••Sintomas: Infecta folhas jovens (com menos de um mês de idade). Pontos minúsculos e translúcidos sedesenvolvem, ficam maiores de cor marrom claro. Após uma semana, a superfície de baixo da folha
desenvolve bolhas com áreas encharcadas de água ao redor das bolhas. Após os esporos terem sido
liberados, as bolhas ficam esbranquiçadas e macias. As folhas afetadas são distorcidas e enroladas demaneira irregular. A infecção da gema leva a um formato de pescoço de ganso, morte e ruptura no ponto de
infecção.
Dano: As gemas novas afetadas se dobram e ficam distorcidas e podem se romper ou morrer. Perdas de até
43%.
Favorecido por condições climáticas úmidas sob muito sombreamento ou durante condições climáticas
nubladas e úmidas. Temperaturas entre 17 e 22ºC. Altas atitudes > 1500 m.a.n.m e raios de sol abaixo de 4 a 5
horas por dia. Os esporos são dispersos pelo vento. O fungo sobrevive nas folhas infectadas.
Prevenção: ajustar o momento da regulação de sombra em áreas susceptíveis antes que as condições fiquem
propícias para a infecção da queima da bolha.
Controle biológico: Ochrobactrum anthropi BMO-‐111 aplicado semanalmente. Se a temperatura exceder
30ºC, então tratar com uma rodada de aplicação de fungicida.
Controle mecânico: Remover e destruir todos os ramos afetados.
Variedades tolerantes: O clone PS1 é altamente resistente a queima da bolha na Indonésia. GMB-1, GMB-2 e
GMB-3 mostram alguma resistência. TV34 e TV35 são clones de alta produtividade que podem ser cultivados
em condições secas para reduzir as doenças fúngicas.
Controle químico: Pulverizar a mistura de Bordeaux ou Oxicloreto de Cobre (350g em 67 L de água) em
combinação com cloreto de níquel 11 em campo podado em intervalos de 3 dias. Alternar a pulverização de 2
a 3 rodadas de 5 a 10% de extrato aquoso de Cassia alata/Polygonum hamiltoni/Acorus calamus/ Adhatoda
vasica/ Equisetum arvense/ Polygonum hydropiper/ Tagetis petula quinzenalmente.
Níveis de tolerância: 25 a 35% de plantas infectadas. Controle biológico e controle mecânico devem seriniciados nos primeiros sinais de infecção.

11 Deve ser usado como último recurso.

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A mancha cinza e marrom (Pestalotiopsis theae e Colletotrichum camellia).
Doença fúngica.
•••
Mancha cinza(Pestalotiopsis theae).

•••

Sintomas: Começando pelas folhas mais jovens, lesões necróticas irregulares, cinzas ou marrons desenvolvem
nas folhas. As folhas com frequência apresentam algum amarelamento. Posteriormente os esporos pretos
ficam visíveis.
Dano: Queda das folhas levando a desfolhação. Redução na produtividade levando à perda do cultivo decerca de 17%.
Favorecido por colheita com tesoura ou colheita manual durante a temporada de chuva. A maioria ataca
arbustos de chá fracos ou danificados. Infecção secundária após controle inadequado da queima da bolha.
Prevenção: Evitar estresse da planta. Espaçamento adequado para permitir suficiente circulação do ar e
reduzir a umidade e a duração da umidade da folha. Uso de variedades resistentes como a IRB88-15 davariedade Yakubita (Japão), CP-1 e TV-26 no sudeste da Ásia e 31/11 e 303/199 na África (Quênia).
Controle químico: Fungicidas. Alternadamente pulverizar de 2 a 4 rodadas de 5% de extratos aquosos deAmphineuron opulentum/ Cassia alata/ Polygonum sinensis quinzenalmente.
Níveis de tolerância: 35% de plantas infectadas

Mancha Marrom (Colletotrichum
ssp).

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SA-G-SD-9-V1-PT

Queima do fio (Corticium/ Pellicularia koleroga, C. invisum)
Doença fúngica que também afeta o café, pimenta preta, pimentas, citrus, gengibre e mogno.
Causada por esses dois fungos. Mais prevalecente em planícies do que em colinas.
••••

Vertente branca do fungo
Pellicularia koleroga no lado debaixo de uma folha de café.

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•
•

Sintomas: As folhas e galhos ficam marrons com um ‘carpete’ de teias fúngicas brancas no lado de baixo das
folhas. As folhas mortas ficam penduradas por fios finos nos ramos.
Dano: Desfolha aguda.
Favorecida por condições úmidas e quentes.
Prevenção: Colheita do chá apenas em clima seco para evitar a transmissão da doença. Colheita regular.
Melhorar a aeração e drenagem.
Controle mecânico: Poda e queima dos brotos afetados ao menos 30cm abaixo da área afetada.
Controle biológico: C. invisum é controlado pela bactéria Bacillus subtilis.
Controle químico: Novos ramos são protegidos com pulverizações de cobre ou fungicidas.
Níveis de tolerância: Controle mecânico imediato. Controle químico em um nível de 35% de árvores infestadas.

Roseliniose (Veja o final do documento para mais informações) (Rosellinia arcuata).
Doença fúngica.
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•
Roseliniose (Rosellinia arcuata).

•

Sintomas: Micélio preto nas raízes infectadas, micélio em formato de estrela branca entre a casca do tronco e
a madeira. Um anel de tecido inchado se desenvolve acima da área morta e circula a gema.
Dano: Infecção de 60 a 90% pode causar cerca de 27% de queda de produtividade, e infecção acima de
90% pode causar 36% de redução de produtividade.
Favorecido por: alta umidade e acúmulo de água (geralmente prevalente durante a época de chuva).
Prevenção: Evitar acúmulo da água. Após a poda, sempre remover o material doente.
Controle mecânico: cavar uma trincheira ao redor dos arbustos afetados para secar o solo e prevenir adispersão do micélio. Em casos severos, remover e destruir os arbustos infectados.
Controle biológico: Trichoderma sp. e Gliocladium virens aplicados nas fendas de plantio para a prevenção dedoenças radiculares.
Controle químico: Aplicação sistêmica de fungicidas. Utilização de pesticidas sintéticos localmente aprovados
apenas como último recurso. Antes de realizar a aplicação de pesticidas, sempre consulte a lista de Inseticidas
Proibidos e em Mitigação de Risco do Anexo S7 da Norma 2020 da Rainforest Alliance.
Níveis de tolerância: Cada árvore individualmente afetada precisa ser tratada imediatamente.

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SA-G-SD-9-V1-PT

Doença da raiz vermelha (Poria hypolateritia).
Doença fúngica que também afeta o café, Seixo, Albizzia e Eritrina.
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Doença da raiz vermelha (Poria
hypolateritia).

••

Sintomas: Micélio branco posteriormente ficando vermelho-sangue nas raízes infectadas e também crescendo
no solo.
Dano: Espalha-se rapidamente, lentamente matando o arbusto. Amarelamento e murchamento da folhagem;
morte repentina da parte da planta; folhas murchas permanecem presas à árvore por muitos dias.
Favorecido por espaçamento de plantio curto pois a proliferação ocorre de raiz para raiz.
Prevenção: Aumentar a drenagem no solo e evitar espaçamento muito próximo.
Controle biológico: Trichoderma sp. e Gliocladium virens aplicados nas fendas de plantio para a prevenção dedoenças radiculares. Aplicações sistêmicas de fungos do gênero Cunninghamella. Streptomyces griseus e
Streptomyces lydicus
Controle mecânico: Arranquio e queima dos arbustos infectados, incluindo todo o material radicular.
Níveis de tolerância: Toda planta infectada precisa ser arrancada imediatamente. A área ao redor precisa ser
tratada e reabilitada antes do replantio.

Doença da raiz marrom (Fomes noxius/ Formes lamaoensis).
Doença fúngica que também afeta o café, Seixo, Albizzia e Eritrina.
•

Apodrecimento da raiz causado
pela doença da raiz marrom(Fomes noxius).

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Sintomas: Micélio marrom em padrão de rede é observado embaixo da casca da árvore. As raízes infectadas
ficam macias e esponjosas.
Dano: Espalha-se lentamente, rapidamente matando o arbusto.
Favorecido por baixas elevações. Espaçamento curto no plantio.
Prevenção: Evitar plantios muito próximos pois a infecção passa de raiz para raiz.
Controle mecânico: Arranquio e completa remoção dos arbustos afetados.
Controle biológico: Trichoderma sp. e Gliocladium virens aplicados nas fendas de plantio para a prevenção dedoenças radiculares.
Níveis de tolerância: Cada arbusto precisa ser tratado individualmente.

Murchamento causado pela Raiz
Marrom.
(Fomes noxius/ Formes
lamaoensis).

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SA-G-SD-9-V1-PT

Cancro do caule (Macrophoma theicola).
Doença fúngica.
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Cancro do caule (Macrophoma
theicola).

•

Sintomas: Os primeiros sintomas incluem a coloração marrom e a queda das folhas afetadas. Como a doença
se espalha para brotos, eles secam e morrem.
Dano: Todo o ramo pode morrer da ponta em diante. Os ramos mortos mostram lesões rasas e de proliferação
lenta, cercadas por uma área mais grossa de madeira.
Favorecido por plantio muito profundo e alagamento.
Prevenção: Plantio em solos bem drenados e ácidos.
Controle biológico: Trichoderma sp. e Gliocladium virens aplicados no solo ao redor do arbusto e utilizados
para cobertura do ferimento.
Controle mecânico: Remover os galhos doentes ao cortar por vários centímetros abaixo da área afetada e os
desinfetando.
Controle químico: Aplicação de fungicidas protetivos apropriados durante o período de clima úmido ou
queda natural da folha para proteger as cicatrizes da folha da infecção. Utilização de pesticidas sintéticos
localmente aprovados apenas como último recurso. Antes de realizar a aplicação de pesticidas, sempre
consulte a lista de Inseticidas Proibidos e em Mitigação de Risco do Anexo S7 da Norma 2020 da Rainforest
Alliance.
Níveis de tolerância: Cada arbusto precisa ser tratado individualmente.

Morte de galho causada por(Macrophoma theicola).

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SA-G-SD-9-V1-PT

Ferrugem do Chá (Cephaleurus parasiticus, C. virescens)
Uma alga patógeno das plantas de chá.
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•
•
Ferrugem do chá (Cephaleurusparasiticus)•••

Sintomas: Manchas coloridas avermelhadas cobrindo as folhas e os ramos.
Dano: Perdas de cultivo > 20%.
Favorecida por baixa fertilidade do solo. Começa com o início das chuvas.
Prevenção: Garantir suficiente fertilização com nitrogênio e potássio. Evitar acúmulo da água. Melhorar acirculação de ar entre os arbustos.
Clones parcialmente resistentes: (0-10% susceptibilidade), comoas TV-17, TV-23, TV-24, TV-25, TV-26 e TV27. Evitar
clones de folhas largas.
Controle biológico: Bactéria Streptomyces sannanensis ou Streptomyces griseus.
Controle químico: Pulverização de fungicidas sistêmicos. Alternar com a pulverização de 4 a 6 rodadas de 5%
de extrato aquoso de Argimone maxicana/ Polygonum hemiltonii em intervalos quinzenais.
Níveis de tolerância: 30% de folhas infectadas.

Mal rosado (Corticium salmonicolor syn. C salmonicolor)
Doença fúngica.
••••
Mal rosado (Erythricium ssp.)•••

Sintomas: O sinal de alerta precoce é geralmente a presença de teias de aranha. Seguida pelo surgimento depontos coloridos rosados que se desenvolvem em um carpete de fungos em direção a ponta de galhos eramos sombreados.
Dano: A parte acima da infestação morre.
Favorecido por condições úmidas e quentes.
Prevenção: Evitar a superlotação com a poda regular. Espaçamento curto no plantio deve ser evitado. Mantero crescimento de plantas saudáveis e vigorosas reduz a incidência da doença.
Controle mecânico: Melhoria do espaçamento para permitir movimentação livre do ar. Poda e destruição deramos infectados abaixo das áreas afetadas.
Controle químico: aplicação de fungicidas a base de cobre diretamente na gema principal e nas partes demadeira dos ramos. Utilização de pesticidas sintéticos localmente aprovados apenas como último recurso.
Antes de realizar a aplicação de pesticidas, sempre consulte a lista de Inseticidas Proibidos e em Mitigação de
Risco do Anexo S7 da Norma 2020 da Rainforest Alliance.
Níveis de tolerância: Cada arbusto precisa ser tratado individualmente.

Crosta de Mal rosado (Corticium
salmonicolor) em um ramo morto.

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SA-G-SD-9-V1-PT

INFORMAÇÕES ADICIONAIS SOBRE DOENÇAS RADICULARES
Primárias
1 Morte Descendente (Ustulina zonata)
2. Doença da raiz vermelha (Poria hypolateritia).
3. Doença da raiz marrom (Fomes lamaensis/noxius)
4. Doença da raiz frisada (Hypoxylon asarcodes).5. Doença da raiz roxa (Helicobasidum compactum Boedijn)
6. Doença da raiz preta (Rosellinia arcuate)
7. Armillária (Armillaria mellea) na África. Arrancar os arbustos afetados com todas as raízes
e removê-los do campo em um saco e queimá-los. Garantir que quando a terra for
preparada para o plantio, todas as raízes das árvores/arbustos que foram removidos sejam
extraídas do solo e levadas para serem queimadas. As árvores que tiverem que serremovidas devem ser aneladas no tronco para garantir que suas reservas de amido sejam
consumidas de forma que o fungo não possa mais viver em quaisquer raízes deixadas.
Secundárias
1 Doença da raiz roxa (sphaerostilbe repens).
2. Mancha espinhosa (Aglaospora.sp)
Recursos
Aplicativo da Rainforest Alliance sobre pesticidas e suas alternativas:
https://play.google.com/store/apps/details?id=org.ipmcoalition.pesticidealternatives
https://apps.apple.com/app/id1461460997#?platform=iphone
Referências
Uma lista de clones recomendados no Sri Lanka para diferentes elevações e sua resistência
a pragas pode ser encontrado aqui:
https://www.tri.lk/userfiles/file/Advisory_Circulars/TRI_Advisory_Ciculars_PN_01.pdf
Uma lista extensiva de pragas e doenças do chá na Índia pode ser encontrada aqui:
http://www.upasitearesearch.org/pests-and-diseases/
Um manual compreensivo da AESA para produtores de chá pode ser encontrado aqui:
https://niphm.gov.in/IPMPackages/Tea.pdf
Der Tropenlandwirt (Journal of Agriculture in the Tropics and Subtropics) 101 (abril de 2000)
pp. 13-38 fornece descrições de vários fatores que levam a doenças e infestações depragas.
Créditos das fotos:
Mick Talbot [CC BY 2.0], via Wikimedia Commons
Keith, l., Ko, W.H and Sato D.M. 2006. Identification Guide for Diseases of Tea (Camellia sinensis). Plant Disease, 33, pp-1-4.
Ravi Pujari
Directorate of Plant Protection Quarantine and Storage; N. H. IV, Faridabad, Haryana.
National Institute of Plant Health Management; Rajendranagar, Hyderabad, Telaangana.
Department of agriculture and cooperation; ministry of agriculture government of India
https://www.revolvy.com/page/Corticium
J. Erikss. & Hjortstam
Nagesh, I. University of Horticultural Sciences, Bagalkot College of Horticulture
Biswapriya Misra, University Sains Malaysia
Centre for e-Learning, Kerala Agricultural University, KAU Agri Infotech Portal
Kohler F, Pellegrin F, Jackson G, McKenzie E (1997) Diseases of cultivated crops in Pacific Island countries. South Pacific Commission. Pirie Printers Pty Limited,
Canberra, Austrália.
Prof. Dr S A Samad, Dept of Microbiology and Biotechnology, GNIPST, Calcutta, India
Jürgen Kranz - http://ecoport.org/ep?SearchType=pdb&PdbID=20164, EcoPort
Shutterstock, Leong9655, Malásia
http://eagri.org, Tamil Nadu Agricultural University
Ryan Brookes, http://insecta.pro
Agritech Portal: Crop Protection, Tamil Nadu Agricultural University (TNAU)
Kyoto Prefecture via Ricardo Caicedo
Bettman, https://www.inaturalist.org/taxa/124755-Endromidae
Takashi Shinkai, Minden Pictures
Nan Jiang, Dayong Xue, Hongxiang Han - A review of Biston Leach, 1815
Satyajit Sarkar, S. E. Kabir, Department of Tea Science, University of North Bengal
www.vikaspedia.gov.in
S. Bambara Ravi Pujari Mendel et al, 2012a; Rabaglia et al. 2006; UCR_Eskalen Lab. Riverside

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SA-G-SD-9-V1-PT

ORIENTAÇÕES ESPECÍFICAS PARA CACAU
Aviso legal
Essa orientação específica para cultivo de MIP não visa cobrir todas as pragas possíveis por
cultivos. A intenção é apresentar as pragas/doenças mais comuns que afetam certos
cultivos em várias regiões ao redor do mundo.

Informações Gerais
Recomendações para o Cacau (Theobroma cacao)
Escolha de um local
adequado para o cultivo.

Condiçõe
s decultivo

AltitudeTemperatura

Chuva

UmidadeEscolha de variedades
adequadas e material deplantio para o local.

Manutenção da saúde e
fertilidade do solo

A produção bem-sucedida de cacau depende da chuva
durante todo o ano, do contrário irrigação é necessária. O
cacau é tipicamente cultivado sob as árvores de sombrade florestas remanescentes ou consorciado com outras
culturas comerciais que dão ao cacau suficiente sombra e
proteção contra o vento, especialmente durante os
primeiros 5 anos de desenvolvimento.
< 1200 m.a.n.m.
Temperatura: Além da chuva, um dos fatores climáticos
mais críticos para o crescimento e desenvolvimento do
cacau. Média ideal diária: 24°C.
min. 15C; máx. 35°C, mas as flutuações reduzem a
produtividade.
>1500 até 2000mm anualmente distribuído de maneira
uniforme. Períodos de seca (com <100mm/mês) não
devem exceder 3 meses. Do contrário é necessária
irrigação.
80%-100%
Uma atmosfera quente e úmida é essencial para odesenvolvimento ideal das árvores de cacau.
A preferência deve ser dada a variedades/híbridos
resistentes a secas e doenças, e que sejam aprovados
pelas autoridades nacionais competentes onde possível,como o UF-18 (liberado pelo Conselho Nacional de Indústriade Sementes nas Filipinas).
Utilizar materiais de plantio bons e saudáveis, bem comomudas vigorosas e saudáveis de viveiros certificados
genuínos e de reputação. Mudas ou brotos ou enxertos quetenham de 4 a 6 meses de idade.
Variedades livres de doenças, de alta produtividade,resistente a seca e a doenças, que sejam aprovados pelas
autoridades nacionais ou locais competentes devem serutilizadas.
Como o cacau tem um sistema radicular de 1,5m, solo
friável, livre de duripãs é necessário para produzir árvores decacau.
A faixa de pH ideal é 6,5 até 7,0.
Para cada 1t de amêndoa seca colhida, 25kg de N, 4--10kg
de P, 40-60kg de K, 8-11kg de Mg, e 5-9kg de Ca devem serrepostos anualmente.
(Para mais detalhes, veja o Documento de Orientação para Solo.)63
SA-G-SD-9-V1-PT

Manutenção de níveis
adequados de matéria
orgânica no solo (MOS)

Manutenção datemperatura e umidade
do solo.

Manutenção de níveis
adequados de sombra

Pragas e doenças
importantes para o cacau
por região:O cacau é sensível a seca, bem como ao acúmulo deágua, portanto, alto conteúdo de matéria orgânica no solo
é imprescindível (> 3%). MOS adequado garante uma
drenagem adequada bem como retenção de água emantém os níveis de microrganismos benéficos. Como ocacau com frequência é estabelecido em solos de florestas
previamente limpas, os níveis de MOS geralmente se
reduzem rapidamente se não forem repostos através defrequentes adições de esterco animal, composto ou
cobertura morta. Culturas de cobertura adequadas
também podem ser usadas, se o material orgânico
permanecer como uma cobertura na plantação.
A criação de um microclima que seja favorável para aplantação de cacau e desfavorável para pragas edoenças pode ser um fator de prevenção crítico ou, ao
menos, reduzir a severidade de uma infestação. Isso éespecialmente importante durante temporadas quentes e
secas que podem ocorrer com maior frequência devido às
mudanças climáticas. Isso pode ser atingido com níveis
adequados de sombra, mas também através de coberturasde solo na forma de cobertura morta ou culturas decobertura (durante os primeiros 5 anos). A cobertura é
mantida distante da base da planta para reduzir o risco dedoenças. A cobertura é reaplicada no final da época dechuva.
A sombra protege árvores jovens de cacau do estressecausado pela seca e pela exposição ao sol. A diversidadede espécies de árvores fornecendo níveis de sombra entre
30 e 50% é recomendada. Os níveis de sombra podem serde até 70% para cacau novo e à medida que as árvores decacau crescem e começam a gerar sombra para elasmesmas, o número de outras árvores de sombra pode serreduzido gradualmente. As configurações da agrofloresta
que fornecem várias camadas diferentes de sombra
podem, no entanto, ser vantajosas para uma maior
biodiversidade e um microclima favorável.
Oeste da África Vagem negra (principalmente
Phytophthora megakarya),
Vírus do Broto Inchado (Badnavirus), Mirídeos (Sahlbergellasingularis e Distantiella theobroma).
América do Sul: Vassoura de bruxa (dispersa até o Panamá)(Moniliophthora perniciosa), Podridão Gelada (Exceto no
Brasil) (Moniliophthora roeri), Podridão Parda(principalmente Phytophthora palmivora, P. capsici),
Mirídeos.
Mesoamérica: Podridão gelada (Moniliophthora roreri),vagem negra (Phytophthora palmivora), Mirídeos.
Sudeste asiático: Morte Vascular do Cacau (Oncobasidium
theobromae), Broca do Cacau (Conopomorphacramerella), Mirídeos (Helopeltis spp.)12

Existe o aplicativo móvel “HabitApp” que ajuda a fazer uma leitura instantânea dacobertura de sombra do cacau. Ele pode ser baixado no seguinte link: HabitApp - Apps on
Google Play
12 Fonte: ICCO (2015), http://www.icco.org/about-cocoa/pest-a-diseases.html.

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SA-G-SD-9-V1-PT

PRAGAS COMUNS NO CACAU
Principal:
Tipo de praga

Mosquito do Chá(Informações Gerais)

Estágios da vida da praga que ela causa dano.
Estágios da vida da praga que ela não causa dano.
EstágioDuração (depende da espéciee das condições ambientais)

HabitatOvo

De 5 a 26 dias

Inseridos no tecido da planta de uma planta hospedeira.

Ninfa

De 10 a 30 dias

Jovens ninfas geralmente se agregam.

AdultoVariado.

Móvel, geralmente depende do hospedeiro mas também seescondem em fendas nas cascas de árvore, estruturas, etc.).

Mosquito do Chá (Helopeltis antonii)

Dano causado pelo mosquito do chá.

Mosquito do Chá (Helopeltis antonii)
Insetos esguios marrons e avermelhados, de <10mm de comprimento com antenas, que são quase duas vezes mais compridas do que o corpo.
•••

Sintomas: Os frutos infestados desenvolvem pontos de acúmulo de água causados pela múltiplas feridas de alimentação. Esses pontos em
seguida ficam pretos. Os frutos ficam deformados e com cicatrizes.
Dano: Os ovos são inseridos dentro do tecido macio perto das pontas dos brotos de florada ou vegetativos, bem como de frutos em
desenvolvimento. O dano da alimentação aparece como lesões descoloridas. Infestações pesadas resultam na má-formação dos frutos eem sua queda precoce. Patógenos de doenças secundárias podem entrar através do tecido ferido da planta. Frutas caídas atraem
pragas.
Favorecido por: A temporada de chuva ou chuvas erráticas levam ao surgimento de novos brotos. As populações geralmente seconstroem nas temporadas úmidas e ensolaradas. Temperaturas > 28ºC.

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•
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•

Prevenção: Monitoramento regular uma vez que os ataques ocorrem repentinamente. Conservar os diversos inimigos naturais como as
formigas -tecelãs. Não fazer consórcios com plantas hospedeiras alternativas como caju, chá, batata doce, goiaba, algodão e manga.
Manter um bom manejo da plantação com relação à poda, manejo do mato e sombreamento.
Controle biológico: Parasitoides: Telenomus ssp, Chaetostricha sp, Erythmelus helopeltidis. predadores: Panthous bimaculatus, Sycanus
collaris, Rihirbus trochantericus luteous, Chrysoperla sp; Entomopatógenos: Beauveria bassiana
Controle químico: Utilização de pesticidas sintéticos localmente aprovados apenas como último recurso. Antes de realizar a aplicação depesticidas, sempre consulte a lista de Inseticidas Proibidos e em Mitigação de Risco do Anexo S7 da Norma 2020 da Rainforest Alliance.
Níveis de tolerância: Nível de dano de 1 a 5%.

Sahlbergella singularis

Distantiella Theobroma

Morte de uma jovem árvore causada por danos de
Mirídeos.

Mirídeos do cacau (Sahlbergella singularis) ou (Distantiella theobroma)••••

Sintomas: as ninfas dos Mirídeos e suas formas adultas perfuram a superfície das gemas, ramos e frutos para sugar seiva, causando lesões
necróticas.
Dano: pode resultar na morte das folhas e ramos terminais. Árvores jovens inteiras podem morrer. Os Mirídeos são vetores de infecções
fúngicas (Calonectria rigidiuscula, etc.) que podem causar a morte do cacau.
Favorecido pelas árvores expostas a luz solar, árvores jovenscom a primeira liberação de folhas, brotos e frutos novos. As populações
geralmente se constroem nas temporadas úmidas e ensolaradas. Temperaturas > 28ºC.
Prevenção: O sombreamento deve ser desenhado para proporcionar um equilíbrio entre o controle dos Mirídeos, a florada e o manejo
podridão parda. Hospedeiros alternativos não devem ser usados como árvores de sombra em fazendas de cacau. O período das
intervenções é crucial para o sucesso do controle. Adquira informação suficiente de grupos produtores ou extensionistas. As populações
geralmente começam a se formar já em junho e a observação/monitoramento deve começar.

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Alguns novos clones parecem ser menos atraentes para Mirídeos. Em Gana, por exemplo, os híbridos (com frequência chamados de mistos)dos jardins de sementes autorizados da COCOBOD são conhecidos por terem alguma tolerância a Mirídeos. O CIRAD identificou alguns
genótipos resistentes da Guiana Francesa. Como os Mirídeos colocam seus ovos nas cascas das gemas ou nas cascas dos frutos, pintar agema com gesso para cobrir as fendas e coletar todas as cascas pode ajudar a reduzir as taxas de infestação.
Controle biológico: A formiga preta (Dolichoderus thoracicus) foi utilizada em algumas fazendas como medida de controle. Manutenção
abundante de colônias de formigas-tecelãs (Oecophylla longinoda).
Controle químico: Resistência a inseticidas comumente utilizados tem se tornado um problema cada vez maior no controle dos Mirídeos.
Portanto, a utilização de pesticidas sintéticos localmente aprovados deve ser apenas como último recurso. Antes de realizar a aplicação
de pesticidas, sempre consulte a lista de Inseticidas Proibidos e em Mitigação de Risco do Anexo S7 da Norma 2020 da Rainforest Alliance. A
pulverização é mais eficiente de Setembro a Maio.
Níveis de tolerância: Armadilhas pegajosas e armadilhas com feromônios podem ser utilizadas para o monitoramento. De 1 a 4 Mirídeos porárvore.
Percevejo (Bathycoelia thalassina)
Utiliza suas longas partes bucais para penetrar através da casca do fruto e sugar o conteúdo das amêndoas.
•••

Percevejo (Bathycoelia thalassina) em
um fruto de cacau com danoscausados por Mirídeos.

•••
Amadurecimento prematuro docacau causado pelo percevejo(Bathycoelia thalassina).

•

Sintomas: Percevejos não deixam marcas de ação nos frutos mas causam o seu amadurecimento
prematuro. Os frutos ficam amarelos e deformados.
Dano: Perda de frutos causa redução na produtividade. Também ataca novos brotos e chupões.
Prevenção: Manter sombreamento e níveis de copa adequados. Se os insetos forem uma praga
importante na área, evite utilizar árvores hospedeiras alternativas como manga (Mangifera indica), noz decola (Cola acuminata), e Citrus spp como sombra. Remover os chupões com frequência uma vez queeles atraem percevejos e também são usados como locais de colocação de ovos.
Controle biológico: Liberar vespas parasitas (Hymenoptera) ou espécies de moscas Taquinídeas. Pesquisas
sobre outras espécies de percevejos mostram bons resultados com iscas de feromônios colocadas nochão.
Controle químico: Piretroides pulverizados de forma localizada nas áreas infestadas. Do contrário,mantenha as aplicações de inseticidas ao mínimo para manter uma boa população de inimigos naturais.
Utilize pesticidas sintéticos localmente aprovados apenas como último recurso. Antes de realizar a
aplicação de pesticidas, sempre consulte a lista de Inseticidas Proibidos e em Mitigação de Risco do
Anexo S7 da Norma 2020 da Rainforest Alliance.
Nível de tolerância: 10% frutos amadurecidos precocemente ou um total de 25 percevejos em 10 árvores
que estão expostas ao sol.
Monitorar os níveis de pico de população de março até junho e de agosto até setembro.

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Estágio

Cochonilhas-farinhentas(informações gerais)

Ovo
Ninfa
AdultoPlanococcus lilacinus

Duração (depende da espéciee das condições ambientais)
1 semana
De 1 a 2 meses.
A fêmea morre após pôr osovos.

Paracoccus marginatus

Habitat
Em um caso pegajoso nas axilas das gemas ou folhas.
Cochonilhas móveis
Machos móveis com asas. As fêmeas são sésseis nos brotos,
axilas da filha, nervos centrais ou raízes.

Rastrococcus iceryoides

Cochonilha-farinhenta (Planococcus lilacinus, Planococcus citri, Paracoccus marginatus, Drosicha mangiferae, Planococcoides jalensis, e Rastrococcus iceryoides).
• Sintomas: As cochonilhas colonizam as partes macias da planta, bem como frutos maduros que aparentam estar cobertos com pontos
brancos macios.
• Dano: A alimentação das cochonilhas induz o murchamento do fruto. Vetor do vírus do Broto Inchado e outras doenças virais• Favorecido pela presença de formigas Philidris, condições quentes e secas e excessiva fertilização de nitrogênio.
• Prevenção: Controle de formigas. Impedir as formigas Philidris de subir na árvore ao colocar fitas pegajosas ao redor do caule. Isso ajudará
os inimigos naturais (vespas parasitas e formigas-leão). Os pássaros desempenham uma função importante na redução das populações decochonilha.
• Controle biológico: O melhor controle é atingido com a joaninha Crytolaemus montrouzier que é um predador, e cujas ninfas parecemuma cochonilha-farinhenta. A taxa de liberação indicada é: 5 besouros/árvore de cacau infestada. Na Índia, as lagartas de Spalgis epeus,
que também se assemelham a cochonilha-farinhenta são seu predador mais comum. Os predadores que se assemelham a cochonilhas
podem ser diferenciados por suas presas e pelo seu alto nível de mobilidade, enquanto as cochonilhas são imóveis.
• Controle químico: A árvore de noz-de-sabão indiana (Sapindus Mukoross), essas nozes imersas em água por 48 horas produzem sabão que
também possui propriedades inseticidas). Isso combinado com Nim/Pongamia pinatta funciona bem contra cochonilhas.
• Utilização de pesticidas sintéticos localmente aprovados apenas como último recurso. Antes de realizar a aplicação de pesticidas, sempre
consulte a lista de Inseticidas Proibidos e em Mitigação de Risco do Anexo S7 da Norma 2020 da Rainforest Alliance.
• Níveis de tolerância: Árvores infestadas podem ser tratas individualmente por aplicações localizadas. A pulverização é recomendada se 5%
das árvores estão afetadas em um estágio de frutificação.

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Ovo

Duração (depende da espéciee das condições ambientais)
7 - 70 dias

Ninfa

< 2 meses.

Estágio
Gafanhotos e Insetos
Saltadores(Informações Gerais)

Adulto< 5 meses.
Gafanhoto Flatídeo vários Flatidae spp.
Praga grave na região da Ásia e Pacífico.
•••Ninfas de gafanhotos flatídeos.
(Melormenis basalis)

•
•
•

•

HabitatGafanhotos: solo; Grilos: nervo central das folhas.
Móveis, se alimentando enquanto estão alojados nas plantas
principalmente à noite.

Dano: Ninfas e Adultos sugam a seiva das flores, brotos macios e frutos. Eles excretam um melado que resulta no
desenvolvimento de fumagina nas folhas e frutos. Eles também podem ser vetores de vírus e doenças.
Favorecido por padrões de seca/chuva invertidos. Populações se desenvolvem durante as temporadas debaixa luz solar.
Prevenção: Árvores cultivadas sob sombra mostram menos problemas com gafanhotos. A cobertura do solo
melhora o microclima e também reduz as populações de gafanhotos.
Controle mecânico: Uso de armadilhas de luz.
Controle biológico: Joaninhas, formiga-leão, louva-deus. Pulverizar Verticillium lecanii (2 g/l).
Controle químico: Pulverização de Piretro, óleo de Nim ou uma mistura de óleos de mentol e cânfora. Utilização
de pesticidas sintéticos localmente aprovados apenas como último recurso. Antes de realizar a aplicação depesticidas, sempre consulte a lista de Inseticidas Proibidos e em Mitigação de Risco do Anexo S7 da Norma 2020
da Rainforest Alliance.
Níveis de tolerância: 5% de árvores afetadas em um estágio de frutificação.

Limoeiro-cítrico (Metcalfa pruinosa)

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Estágio
AfídeosDuração (depende da espéciee das condições ambientais)

Habitat10 – 14 dias de ciclo de vida

Lado de baixo das folhas, brotos jovens, ramos verdes.

Ovo
Ninfa
AdultoToxoptera aurantii em folhas e brotos jovens.

Aphis gossypii no lado de baixo de uma folha.

Afídeos Toxoptera aurantii e Aphis gossypii)
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Sintomas: Os afídeos formam colônias no lado de baixo de folhas macias, gemas suculentas, brotos de flores e pequenos frutos.
Dano: Ninfas e adultos perfuram o tecido da folha e sugam a seiva. O crescimento da planta é atrofiado. Vetor de vírus. Queda prematura deflores e encarquilhamento das folhas.
Geralmente ocorrem durante verões quentes e após a temporada de chuva. Favorecido por plantas estressadas e falta de predadores
naturais.
Prevenção: melhorar o manejo da plantação para evitar o estresse das plantas, especialmente o microclima e níveis de MOS para garantir
suficiente disponibilidade de nutrientes e água. Fornecer áreas com plantas hospedeiras em florada para atrair populações de predadores em
longo prazo.
Controle mecânico: Se a população de afídeos estiver limitada a algumas folhas ou brotos, então a infestação pode ser podada para
controle; as plantas podem receber um forte jato de água para retirar os afídeos das plantas.
Controle biológico: Formiga-leão, joaninha, moscas das galhas, insetos predadores, sirfídeos, vespas parasitas, bem como os fungos
Metarhizium anisopliae ou Entomophtorales ssp.
Controle químico: Pulverizar óleo com sabão ou óleo de Nim. Utilização de pesticidas sintéticos localmente aprovados apenas como último
recurso.
Níveis de tolerância: 20% de infestação.

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Ovo

Duração (depende da espéciee das condições ambientais)
De 1 a 3 semanas

Larva

De 3 a 4 semanas

Pupa

De 1 a 2 semanas

Adulto< 1 mês

Estágio

Mariposas e borboletas(Informações Gerais)

Desfolha causada por lagartas.

Pericallia ricini adulta

Habitat
Na superfície ou inserida dentro da planta hospedeira.
Alimentação do tecido da planta hospedeira.
Pendurada na planta hospedeira ou enrolada na folha. Algumas fazem apupação no solo.
Móveis e alados.

Típica lagarta (Eupterote Testacea).

Lagartas (Lymantriya sp., Euproctis sp., Dasychira sp. Pericallia ricini, Spilosoma obliqua, Metanastria hyrtaca, Hyposidra talaca, Parasa lepida).
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Dano: sérios danos nas folhas de mudas e árvores jovens. Folhas esqueletadas.
Favorecido por padrões invertidos de seca/chuva.
Prevenção: Manter altos níveis de biodiversidade para promover fontes de alimentação alternativas para as lagartas bem como altos númerosde inimigos naturais. Inspecionar as plantas regularmente e remover as colônias precocemente, antes que o dano fique fora do controle.
Controle biológico: Bactéria entomopatogênica Bacillus thuringensis (Bt); insetos predadores como Macrolophus pygmaeus or Nesidiocoris
tenuis; vespas parasitas (Trichogramma ssp).
Controle químico: Óleo de Nim ou produtos de Piretro. No pior dos casos: pulverização foliar de acetato em 2g/litro localizada apenas naseção infestada da planta.
Aviso: esse inseticida está na lista de mitigação de risco da RA e precisa ser usado dentro de um programa de MIP e seguindo as medidas demitigação de risco, conforme explicado no Anexo S7. Utilização de pesticidas sintéticos localmente aprovados apenas como último recurso.
Antes de realizar a aplicação de pesticidas, sempre consulte a lista de Inseticidas Proibidos e em Mitigação de Risco do Anexo S7 da Norma
2020 da Rainforest Alliance.
Níveis de tolerância: 10% das árvores afetadas.

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BDC (Conopomorpha crammerella) camuflada embaixo de
um ramo horizontal.

Danos internos da BDC (Conopomorpha crammerella).
Dano da BDC (Characoma stictigrapta)

Broca do cacau (BDC) (Characoma stictigrapta, onopomorpha crammerella).
A broca do cacau é uma praga grave. Characoma stictigrapta ocorre no Oeste da África.
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Dano: BDC ataca os frutos em todos os estágios de maturação. Os frutos infestados amadurecem de forma desbalanceada eprematuramente. As larvas da broca cavam buracos dentro dos frutos de todos os tamanhos, produzindo uma massa de excremento
juntamente com uma seda na entrada dos buracos. Se a infestação ocorrer no estágio de frutificação, a fruta murcha. A infestação em
estágios precoces leva a graves perdas devido ao fato que a quantidade e qualidade das amêndoas começa a ser seriamente afetada.
Favorecido por solos drenados de forma inadequada e mau manejo da plantação.
Prevenção: Ajustar o nível de sombra e melhorar a aeração através do espaçamento e poda apropriados. Melhorar a drenagem do solo, senecessário. Colher e remover os frutos doentes completa e regularmente.
Controle mecânico: Enrolar os frutos em sacos de papel ou capas de polietileno para criar uma barreira física contra a posta de ovos quandoestão de 8 a 10cm de comprimento.
Controle biológico: Formigas como Dolichoderus thoracicus e Oecophylla smaragdina, o fungo Beauvaria bassiana podem infectar larvas e
pupas, causando uma taxa de mortalidade de 100%. O uso de armadilhas com feromônios sintéticos ou mariposas fêmeas da broca docacau pode controlar o ataque se machos suficientes forem pegos e, portanto, interrompendo o ciclo de reprodução.
Controle químico: BDC pode ser controlada com quantidades relativamente pequenas de piretroides de contato na parte de baixo dos
ramos inferiores, mantendo a população de BDC abaixo dos níveis de dano econômico. Contudo, isso geralmente não é economicamenteviável. Utilização de pesticidas sintéticos localmente aprovados apenas como último recurso.
Níveis de tolerância: O inseto geralmente não é controlado, a não ser com a melhoria da sanidade e do manejo da plantação. Se
armadilhas de feromônios estiverem disponíveis, o nível de tolerância pode ser estabelecido em 10 machos por armadilha por semana.

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Broca da gema do cacau (Eulophonotus Myrmeleon)

Buraco em uma gema causado pelos tuneis feitos pelas
larvas da broca da gema do cacau (Eulophonotus
Myrmeleon)

Broca da gema do cacau adulta (Eulophonotus Myrmeleon)

Broca da gema do cacau (Eulophonotus Myrmeleon) costumava ser considerada uma praga menor, mas vem causando cada vez mais problemasno Oeste da África.
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Dano: Os tuneis das larvas nas árvores de cacau causam danos em cerca de 5% das árvores. A recuperação do dano é improvável. As gemas
mostram buracos, algumas vezes com excrementos na base da árvore e goma saindo dos buracos. Os tuneis cavados causam descoloração
das gemas e brotos. Os dois períodos de ataques severos ocorrem durante as temporadas de chuva, com picos em Junho e em
Dezembro/Janeiro.
Prevenção: Monitoramento semanal para prevenir a infestação.
Monitoramento de adultos aparecendo em agosto e fevereiro. Estrita higiene das plantas. Encorajar populações de pica-paus.
Controle mecânico: Podas de ramos infestados. Arranque e destruição de árvores muito infestadas. Plantio de barreiras como densas faixas deTaro são sugeridas. As barreiras precisam ser de 15m de largura e estabelecidas antes dos novos plantios. Remoção de plantas hospedeirasalternativas também é recomendada. Tapar os buracos para prevenir que as mariposas adultas saiam pode ajudar.
Controle biológico: Liberação de parasitoides como Bracon zeuzerae ouGlyptomorpha ssp. Fungos Beauveria bassiana onde comercialmente
disponível.
Controle químico: Pulverizações são ineficientes e não são recomendadas.
Níveis de tolerância: Assim que os buracos cavados são observados, ações precisam ser tomadas, mesmo em nível individual de árvore.

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Lagarta Espinhosa (Earias biplaga) ataca o cacau, além de uma ampla gama deoutras plantas hospedeiras.
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Dano: A larva se alimenta das pontas em crescimento das gemas e de folhas
jovens. A atividade de alimentação impede que a planta cresça
adequadamente e de formar uma copa.
Favorecido por alta incidência de luz (ausência de sombra).
Prevenção: Plantio de árvores de sombra de crescimento rápido em
plantações recém estabelecidas. Aumentar a biodiversidade, uma vez que alagarta espinhosa prefere plantas hospedeiras selvagens e as utilizará como
fonte de alimento ao invés do cacau. Em um ecossistema com alta
biodiversidade, o número de inimigos naturais também é aumentado.
Controle biológico: Bactéria entomopatogênica Bacillus thuringensis (Bt);
insetos predadores como Macrolophus pygmaeus ou Nesidiocoris tenuis;
vespas parasitas (Trichogramma ssp).
Controle químico: Não necessário. As medidas de controle biológico são
suficientes.
Níveis de tolerância: 40% das árvores afetadas.

Lagarta Espinhosa (Earias biplaga).

Mariposa adulta da Lagarta Espinhosa (Earias biplaga).

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Ovo

Duração (depende daespécie e das condições
ambientais)
30 horasLarva> 1 semana

Pupa

6 diasEstágio

Mosca da Fruta(Informações Gerais)

Habitat
Inserido no tecido da fruta.
Túnel dentro das frutas.

Dentro da fruta ou no chão.
Besouro móvel que voa em busca de plantas hospedeiras e parceiro
Adultode reprodução.
Moscas da fruta (Bactrocera dorsalis e Ceratitis capitata) são moscas minúsculas (de 4 a 6mm de comprimento)
que atacam o cacau no Quênia.
•••Moscas da Fruta (Bactrocera dorsalis)
adultas.

•••

Dano: causado por vermes que se desenvolvem dentro do fruto, após as moscas adultas depositarem
seus ovos em frutos em maturação.
Infecções de apodrecimento secundárias aumentam o nível do dano.
Agravada pela infecção dos frutos restantes no chão, onde os vermes se desenvolvem e infestam
novamente o cultivo. Temperaturas de 20 a 30ºC.
Prevenção: Através do monitoramento e da sanidade do cultivo. Coletar e destruir todos os frutos caídose infectados para evitar que o número de pragas aumente e para cortar o ciclo de infestação. O nível
de tolerância para monitoramento é geralmente feito com armadilhas com iscas e calculado com basenas moscas capturadas/semana. Enrolar os frutos em estágio inicial em sacos de papel ou capas depolietileno para criar uma barreira física para a colocação dos ovos.
Controle biológico: armadilhas com iscas.
Níveis de tolerância: 4 moscas por armadilha/semana.

Moscas da Fruta (Ceratitis capitata)adultas.

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Estágio
Tripes (Informações Gerais)

Ovo

Habitat

Inserido no tecido da planta
Antes de transformar em adultos, as ninfas se escondem no chãoNinfa
3 semanas
sem alimentação.
Adulto< 30 dias
Lado de baixo das folhas.
Tripes (Selenothrips rubrocinatus, Heliothrips rubrocinctus) e Tripes- do-cacaueiro (Selenothrips rubrocinctus).
•
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•
•
•

T
ripes-do-cacaueiro(Selenothrips rubrocinctus).

Duração (depende daespécie e das condições
ambientais)
7 dias•••Sintomas: As Tripes atacam as folhas, flores e brotos mais velhos, raspando o tecido da planta esugando a seiva. As folhas atacadas caem, deixando os brotos expostos com algumas novas folhas
na ponta. As plantas perdem vigor e as folhas murcham.
Dano: Infestação de flores causa má formação dos frutos. Mesmo infestações localmente limitadas
podem causar danos consideráveis. Vetor de vírus.
Favorecido por estresse de seca. Temperaturas de 25 a 30ºC, baixa umidade e presença de pólen.
Prevenção: Conservação dos inimigos naturais.
Controle mecânico: Armadilhas azuis pegajosas (usadas apenas no período de infestação). Assimque for observado que nenhuma praga foi capturada, é melhor removê-las para prevenir que
insetos indesejados sejam capturados, o que pode prejudicar o equilíbrio do meio ambiente.
Controle biológico: Insetos antocorídeos são importantes no controle natural das Tripes. Ácarospredadores podem ser usados no controle de Tripes. Eles devem ser introduzidos no início da época
do cultivo e por muitas outras vezes ao longo da safra.
Controle químico: óleo de horticultura ou solução de óleo e sabão podem ser pulverizados parasufocar as Tripes.
Níveis de tolerância: 1 a 2 por folha durante a seca e de 2 a 3 durante as chuvas.

Danos das Tripes na folha.

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DOENÇAS COMUNS NO CACAU
As doenças fúngicas são de maior importância tanto nas árvores como nos frutos, e a severidade da doença geralmente altera com avariedade. De maior relevância estão as linhagens de Botryodiplodia theobromae, Oncobasidium Theobroma, e Moniliophthora spp. Um outro
grande grupo de doenças é causado pelos Oomicetos , microorganismos parecidos com fungos como as linhagens de hytophtora spp.
A infecção com Phytophtora palmivora pode levar a diferentes expressões de doenças. Durante o estágio de viveiro, ela geralmente causa oapodrecimento da raiz, que leva ao tombamento, chamado de requeima. Em plantações maduras, ela leva à podridão do pé. Contudo,doenças similares também classificadas como a podridão-parda podem ser causadas por diversas outras espécies de Phytophtora. No Oesteda África, nos híbridos de cacau Trinitário, a Phytophtora palmivora causa fendas nos brotos.
Requeima (Phytophtora palmivora)
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•
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•
•
Requeima (Phytophthora palmivora).

•

Dano: As lesões podem aparecer nas folhas e nas gemas. As lesões se desenvolvem manchas em toda afolha ou no escurecimento da gema, rapidamente causando a morte das mudas. Mais severa em mudasde 1 a 4 meses de idade.
Favorecido por acúmulo de água e altas chuvas.
Prevenção: Remoção e destruição de todas as mudas infectadas no viveiro. A doença tem origem nosolo e o solo infectado, portanto, não deve ser reutilizado ou ao menos deve ser esterilizado. Fornecer
drenagem adequada e evitar o acúmulo de água.
Controle biológico: ainda nenhum.
Controle químico: Aplicações sistêmicas profiláticas com mistura de Bordeaux em 1% ou oxicloreto decobre de 2 a 2,5%.
Níveis de tolerância: Ação imediata para melhorar a drenagem e remover as mudas doentes énecessária.

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Podridão-parda (hytophthora palmivora, P. megakarya e P. capsica).
Doença fúngica que pode ser causada por uma variedade de patógenos.
Dano: Os frutos podem ser atacados em qualquer estágio do desenvolvimento, e os sintomas iniciais são manchas pequenas, duras e escuras
em qualquer parte do fruto. Os tecidos internos, incluindo as amêndoas, murcham para formar um fruto mumificado, de cor marrom escuro.
Pode eventualmente ser coberto com o crescimento de fungos brancos.
Os tecidos internos, bem como as amêndoas ficam descoloridos. Se as amêndoas estiverem quase maduras, no momento que o fruto é infectado,elas podem escapar dos danos pois já estão separadas da casca.
P. palmivora causa uma perda global de produtividade de 20 a 30% e tem uma mortalidade de árvores de 10%, anualmente.
P. megakarya é o patógeno mais importante e agressivo na África central e oeste. Se não for tratada pode causar a perda de toda a safra.
P. capsici é amplamente presente na América do Sul e Central, causando perdas significativas.
•• Favorecido por condições de chuva excessiva ou alta umidade, luz do sol insuficiente e temperaturas abaixo de 21ºC.
Espaçamento inadequado e baixa aeração. Em condições ou épocas de seca, o fungo sobrevive nos botões das flores, nos frutos mumificados(secos), cascas de frutos e no solo. Os frutos e outros tecidos danificados por pragas são altamente susceptíveis a essa infecção;• Prevenção: Colheita completa e regular é crucial. Manter altos níveis de sanidade ao periodicamente remover e descartar os frutos e resíduos
infectados. Otimizar o sombreamento e aeração através do espaçamento e poda apropriados para reduzir a umidade da superfície. Melhorar
a fertilidade do solo e aplicar camadas de cobertura suficientes.
• Controle químico: Fungicidas que contenham cobre em intervalos frequentes no início da principal época de chuva.
• Níveis de tolerância: higiene imediata é necessária uma vez que os primeiros sintomas apareçam.

Descoloração roxa visível com a lesão causada.

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Lesão causada pela Podridão Parda.

Danos da podridão-parda no fruto (Phytophthora palmivora)

Pela Podridão Parda (Phytophthora palmivora).

Podridão Parda (Phytophthora palmivora).
•

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Dano: Cancros aparecem no caule principal, nas forquilhas ou ramos laterais. Começa como uma lesão marrom oval na madeira externa,
escorrendo um líquido que foram crostas amarronzadas. Os tecidos abaixo da lesão ficam roxos (podres). Se não controladas, as lesões
cobrirão completamente a gema, impedindo a circulação de água no tecido da planta, eventualmente causando a morte da árvore. Causa
significantes perdas no Oeste da África e em Híbridos Trinitários.
Favorecido por condições úmidas e drenagem inadequada. O dano na madeira é necessário para a infecção da madeira e odesenvolvimento do cancro.
Prevenção: Aumentar os níveis de matéria orgânica no solo para melhorar a drenagem. Evitar ferimentos na madeira. Cortar e remover ramosmurchos.
Controle biológico: ainda não disponível.
Controle químico: Pode ser controlado nos estágios iniciais através da remoção da casca doente e cobrindo o ferimento com mistura de
Bordeaux ou pasta de oxicloreto de cobre.
Níveis de tolerância: Higiene imediata é necessária uma vez que os primeiros sintomas apareçam.

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A Vassoura de Bruxa (Moniliophthora perniciosa) é uma das
mais devastadoras doenças e está espalhada por toda a
América do Sul, Caribe e Panamá.
•

Dano: as árvores de cacau produzem ramos sem
frutos e com folhas ineficientes. Os frutos ficam
distorcidos e demonstram amadurecimento
desequilibrado. Redução drástica de produtividade.

•Favorecido por: altos níveis de umidade (80%) e
temperaturas entre 20 e 30ºC. Espalhada pela água,vento, sementes em trabalhadores ou através dematerial de plantio infectado movido pela
plantação.

•Prevenção: Variedades ou clones resistentes, por
exemplo, aqueles derivados das árvores SCA6. A
poda fornece o melhor controle da Vassoura deBruxa. Remover completamente todas as partes
infectadas das plantas. Melhorar a aeração. O CIRAD
identificou alguns genótipos resistentes da Guiana
Francesa.

•

Controle químico: Fungicidas. Utilização de pesticidas
sintéticos localmente aprovados apenas como último
recurso. Antes de realizar a aplicação de pesticidas,
sempre consulte a lista de Inseticidas Proibidos e em
Mitigação de Risco do Anexo S7 da Norma 2020 daRainforest Alliance.

Crescimento de fungos esbranquiçados nos nervos centrais das folhas mortas pela Vassoura de Bruxa(Moniliophthora perniciosa).

Amêndoas de cacau dentro de um fruto destruído pela Vassoura de Bruxa.

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Morte Descendente (Botryodiplodia theobromae)
•

•

•

•
•
•

Dano: Pontos amarelo claro se desenvolvem em
qualquer parte da superfície do fruto e se espalhamrapidamente, posteriormente ficando marrom
escuros. Todo o fruto, incluindo as amêndoas, ficam
pretos. As amêndoas não se desenvolvem
completamente e ficam mumificadas se infectadas
em estágio precoce.
Favorecido por: época de seca, em árvores queestão sob estresse. Causado por ferimentos nos frutos
feitos por insetos ou roedores. Doença típica deplantações mal manejadas.
Prevenção: Controlar insetos e roedores que possam
causar danos aos frutos. Melhorar o manejo do solo e
do sombreamento, bem como a sanidade. Aumentar
a capacidade de retenção de água ao adicionar
suficientes quantidades de matéria orgânica
(cobertura morta) para evitar estresse por seca.
Controle biológico: ainda nenhum.
Controle químico: Pulverização de mistura de
Bordeaux em 1%.
Níveis de tolerância: Manejo da plantação deve sermelhorado imediatamente assim que aparecerem osprimeiros sintomas.

Danos causados pela Morte Descendente

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Doença fúngica da Podridão Gelada (Moniliophthora roreri)
•
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•

Dano: afeta apenas frutos imaturos. Os pontos aparecem na superfície dos frutos imaturos, ficam
marrons e rapidamente crescem cobrindo toda a superfície do furto. Causa severas perdas nosudoeste da América do Sul.
Favorecido por períodos de altas chuvas.
Prevenção: Seleção de variedades que produzem frutos durante a época de seca. Remoção dos
frutos que demonstram sintomas da doença.
Controle biológico: ainda nenhum.
Controle químico: aplicação de cobre contendo fungicidas ajudará a reduzir a incidência dadoença.
Níveis de tolerância: Ações de higiene imediatas assim que aparecerem os primeiros sintomas
para evitar sua dispersão.

Danos da Podridão Gelada (Monilíase).

Danos da Podridão Gelada nas amêndoas.

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Doença fúngica da Murcha vascular estriada do cacau (MVC) (Oncobasidium theobroma)
•

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•
•
•
Murcha vascular estriada do cacau (MVC)

Dano: O primeiro indicativo da doença é o amarelamento característico de uma ou duas folhas
na segunda ou terceira descarga atrás da ponta em crescimento. As folhas doentes caem em
alguns dias após amarelarem e as outras folhas no broto mostram sintomas similares. Quando obroto infectado é dividido no sentido do comprimento sempre há uma fenda marrom
característica. Causa a secagem da árvore, começando das pontas dos ramos, geralmente
resultando em sua morte.
Favorecido por condições climáticas secas e ventos que dispersam os esporos.
Prevenção: Pode ser controlada com a poda regular dos chupões e remoção dos ramos doentes.
Poda do material doente cerca de 30cm abaixo do tecido descolorido para prevenir posterior
expansão da infecção. Não estabeleça viveiros perto de uma área doente e não receba mudasde áreas doentes. As mudas podem ser produzidas sob plástico para prevenir infecções das
plantações nas proximidades.
Variedades resistentes como CCRP-1 até CCRP-7 da Índia.
Controle químico: Não efetivo.
Níveis de tolerância: Medidas de higiene precisam ser tomadas imediatamente ao aparecerem
os primeiros sintomas.

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O broto inchado é uma doença viral transmitida pela cochonilha. É um problema apenas em Togo,
Gana, Costa do Marfim e Nigéria.
•

•
•

•
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•

Dano: Inchaço dos brotos ou gemas acompanhados pelo avermelhamento dos nervos da folha,
especialmente em folhas mais jovens com manchas cloróticas internervais. Os frutos ficam maciose manchados, com amêndoas reduzidas. Desfolha progressiva pode ocorrer, e por fim levar amorte da árvore.
Favorecido por: Altos níveis de infestação de cochonilha. Hospedeiros alternativos: várias
espécies de árvore como Ceiba pentandra, Sterculia tragacantha, Adansonia digitate, Colachlamydantha e Cola gigantia se mostraram hospedeiros alternativos do VBI em Gana.
Prevenção: Se as infecções forem detectadas precocemente, tratamento localizado de removere destruir as árvores infectadas e aquelas ao seu redor (até 5m da árvore infectada se <10 árvores
foram infectadas e até uma distância de 15m se >100 árvores foram infectadas) para prevenir
posterior dispersão. Estabelecer uma barreira de planta não-hospedeira (por exemplo, óleo depalma) de ao menos 10m para isolar as plantações de cacau umas das outras.
Controlar a cochonilha.
Controle químico: nenhum.
Níveis de tolerância: Ações de higiene imediata são necessárias assim que os primeiros sintomas
apareçam.

Vírus do Broto Inchado (VBI)
Murchamento do cacau: Desordem fisiológica
•
•
•
•
•
•

Dano: Os frutos morrem e mumificam de forma que isso seja um processo natural para evitar oexcesso de carga, mas isso pode levar a perdas significativas. Também encoraja infecções
secundárias com Antracnose.
Favorecido por fatores de enfraquecimento das árvores como ataques de pragas e doenças,baixa fertilidade do solo e mau manejo da plantação.
Prevenção: Melhorar a fertilidade do solo e níveis de matéria orgânica. Densidade do plantio
apropriada ou evitar a superpopulação de árvores.
Controle biológico: nenhum.
Controle químico: nenhum.
Níveis de tolerância: Aos primeiros sinais de infeção, fazer melhorias no manejo da fertilidade do
solo.

Murchamento do cacau

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Créditos das fotos:
Crop Protection, Tamil Nadu Agricultural University (TNAU),
Jeffrey W. Lotz, Florida Department of Agriculture and Consumer Services, Bugwood.org
Florida Division of Plant Industry
Lyle J. Buss, University of Florida
Infonet Biovision
CABI - Cocoa Research Institute of Ghana
CABI - Plantwise Knowledge BankDr YSRHU University Hortiportal
https://plantvillage.psu.edu/topics/cocoa-cacao/infos http://www.dropdata.org/cocoa/cocoa_prob.htm (RPB)
Wikipedia - Bernard Dupont
University of Florida
Farmersgrid, Adhish Technologies, Madurai, Tamil Nadu, Índia
Forum for Agricultural Risk Management in Development
Australian Centre for International Agricultural Research - Helen Tsatsia & Grahame Jackson
Scott Bauer, USDA
Jake Teo
Depositphotos.com
Raymond Cloyd
Akua Konadu Antwi-Agyakwa
Haravu Lokesh
Luntian Farm85
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ORIENTAÇÕES ESPECÍFICAS PARA BANANA
Aviso legal
Essa orientação específica para cultivo de MIP não visa cobrir todas as pragas possíveis por
cultivos. A intenção é apresentar as pragas/doenças mais comuns que afetam certos
cultivos em várias regiões ao redor do mundo.

Introdução
Para países produtores e exportadores, os cultivos de banana (Musa AAA) são de crucial
importância econômica. Além de contribuir em direção a segurança alimentar, o cultivo debanana é uma fonte de trabalhos diretos e indiretos e de trocas internacionais. No entanto,
existem vários desafios na produção de banana, uma vez que é um cultivo extensivo com
longos períodos de produção (o prazo médio de plantação é de 25 anos), tornando-a
susceptível ao ataque de pragas e doenças. Entre as pragas e doenças mais relevantes paraa produção de banana estão a Sigatoka Negra (Mycosphaerella fijienses), insetos (diversosgêneros e espécies que atacam o tronco, as folhas e o rizoma), ervas daninhas (diversosgêneros e espécies de plantas), fungos do pós-colheita (Fusarium spp., Colletotrichum spp.) ea murcha bacteriana (Ralstonia solanacearum). Adicionalmente às anteriores, uma nova
ameaça apareceu nos últimos anos a Podridão Basal (Fusarium oxysporum f.s. cubensi raça
4), que pode devastar plantações inteiras.
Como uma consequência das perdas causadas pelas pragas, o Manejo Integrado de Pragas(MIP) (Stephen e Hansen, apud Cubillo, 2013) foi estabelecido em 1959 como uma estratégia
integral para redução dos custos de produção e proteção da saúde humana e ambiental.
A estratégia de MIP foi adotada na produção de banana após uma série de crises históricas
na proteção desse cultivo, caracterizado pela dependência de pesticidas e seus efeitos
indesejáveis, tais como o surgimento de novas pragas, organismos resistentes, aumentos decusto e perdas associadas a pragas.
O objetivo final de uma estratégia de Manejo Integrado de Pragas é produzir cultivos
saudáveis minimizando o uso de pesticidas.

Recomendações gerais.
Seleção do local para produção.

Condições decrescimento

AltitudeDeclividade
Temperatura
Chuva
UmidadeSeleção de variedades adequadas
por local.

Latitude entre 0 e 15º; Solos de Classe 1 e 2; 0 a 1% dedeclividade; 1,20m de profundidade; solo de textura
argiloso, levemente argilosa , argilo-arenoso, argilo-siltoso;
pH entre 5,5 e 7,0; lençol freático >1,20m; solos sem rochas;sem risco de inundações.
Altitude ideal entre 0 a 300 metros acima do nível do marpara bananas em terras baixas. Entre 350 e 1500 metros
acima do nível do mar para bananas em terras medianas
e altas.
Declividade ideal entre 0 e 1%.
Entre 21 e 30ºC, édia ideal de temperatura em 25ºC.
100-180 mm/mês. Menos precipitação requer irrigação
suplementar.
50%, embora não seja uma variável limitante.
As três variedades mais importantes no subgrupo
Cavendish (AAA) no mundo são: a Nanica (Enana Normal,
Oaxaca e Francesa), Williams e Valery.

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Medidas para controle de erosão

Manutenção da saúde e fertilidade
do solo

Manutenção de bons níveis dematéria orgânica no solo.

1 Plantio em terreno nivelado ou nivelar o terreno ao
preparar os solos.
2. Manter boa cobertura de vegetação natural (entre 50 e60%) sem afetar a produção.
3. Manter uma densidade populacional adequada àvariedade e tipo de solo.
4. Redução da carga química no cultivo ao reduzir o uso
de pesticidas sintéticos e aumento do uso de pesticidas
biológicos e botânicos.
.5. Colocar válvulas de sedimentação ou sedimentos naárea de cultivo e na base dos canais de drenagem(canais de drenagem primários, secundários e terciários).
6. Estabelecer cobertura vegetativa nos canais dedrenagem (em toda a rede de drenagem) para preveniro assoreamento do canal e erosão de base.
7. Em operações que usam irrigação, aplicar apenas a
camada de água necessária para o cultivo.
1 Uso e conservação da matéria orgânica; isso é a fontede fertilidade do solo e melhoria de suas características
físicas e químicas.
2. Redução do uso de fertilizantes sintéticos (se aprodução não for comprometida), especialmente aqueles
que são fontes de nitrogênio.
3. Manutenção adequada da rede de drenagem deforma a ter boa aeração e permeabilidade no solo.
4. Manutenção de uma boa cobertura vegetativa naárea do cultivo.
.5. Determinar a necessidade de aplicações nutricionais
adicionais no cultivo, com base nos resultados das análises
foliares e de solo.
6. Utilizar condicionadores de solo contendo fontes decálcio (calcário dolomítico, gesso, silício) para melhorar a
estrutura do solo.
7. Uso adequado e responsável de agroquímicos é
essencial para manutenção da boa saúde do solo.
1 Deixar os resíduos do cultivo no campo.
3. Manter boa cobertura vegetativa do campo.
4. Manter densidade populacional adequada do cultivo.
.5. Realizar aplicações de fontes adicionais de matéria
orgânica.
6. Boa drenagem.
7. Estabelecer o plantio de cobertura nos canais dedrenagem (em toda a rede de drenagem).
8. Manter a umidade do solo adequada.
9. Aplicar biocondicionadores, tais como algas marinhas eoutros.
10. Reduzir o uso de fertilizantes sintéticos.

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PRAGAS COMUNS NA BANANA
Cochonilhas
Informações Gerais
As cochonilhas, farinhentas ou algodoeiras, são insetos que pertencem aordem Hemiptera e à família Pseudococcidae. São consideradas uma
praga de quarentena. As principais cochonilhas associadas com asbananas são: Planococcus citri Risso, Dysmicoccus brevipes Cokerell,
Pseudococcus jackbeardsleyi Gimpel e Miller, Pseudococcus elisae
Borchsenius e Ferrisa virgata Cokerell (Cubillo, 2013). Diversas espécies
participam como vetores da Estrias da bananeira ( Banana Streak Virus BSV).
•

Sintomas: os seguintes são os sintomas causados pela infestação dediferentes órgãos: deformidades nas gemas terminais e axilares;
secamento e queda de folhas; frutos pequenos e deformados que
caem devido ao impacto das toxinas injetadas ; e finalmente ohospedeiro infestado pode morrer (Palma et al., 2019).

•

Dano: As cochonilhas são conhecidas pela sua importância
comercial, pois elas podem afetar em todos os estágios dodesenvolvimento do cultivo, causando perdas de produção erejeição de frutas para exportação. Isso causa dano direto à planta
devido a sucção da seiva, bem como danos indiretos a partir daquantidade de substâncias e açúcares excretados (melado), que
atraem formigas e favorecem o desenvolvimento da Fumagina nas
folhas e nos cachos. Os danos causados pelas cochonilhas são
evidentes a medida que a planta vai enfraquecendo e também
pela descoloração das folhas com necrose ao longo da margem.

•

Condições de predisposição: Períodos anteriores a alta
precipitação (> 400 mm/mês) favorecem as cochonilhas.

Fêmea adulta da Pseudococcus elisae13

13 Tirada de Cubillo, 2013

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•Formigas associadas com a cochonilha da banana (Pseudococcus elisae)14

Presença da cochonilha da banana () e Fumageira em um cacho debanana. 15

Prevenção:o A destruição do habitat onde os insetos se reproduzem ou sedesenvolvem e de plantas hospedeiras alternativas16;
redução da umidade.
o Se permitido no país de produção, a aplicação de enxofre
na base da planta, do pseudocaule e gema até o engaço(uma prática utilizada para a banana orgânica no Peru)(Pasapera, 2013).
o Manejo adequado da densidade da população, desbrota e
desfolha (ciclos conforme seja apropriado).
o Evitar o acúmulo de resíduos vegetativos na base dabananeira para desfavorecer as colônias de formigas,
considerando que transportam cochonilhas.
o Eliminar as folhas que estão em contato com os frutos e
separar as gemas do pseudocaule.
o Realizar a prática do ensacamento de forma prematura com
inflorescência fechada ou uma bráctea aberta.
o Manter drenagem adequada através da plantação paraevitar alagamentos.
o Evitar aplicar nematicidas e inseticidas que afetem os
inimigos naturais.
o Bom manejo ou controle da grama, especialmente
Ciperáceas (González & Cubillo, 2014).
o Evitar aplicar em excesso fertilização nitrogenada pois
favorece a susceptibilidade da planta ao aumento depragas (Hernández et al., 2011).
o As cochonilhas são geralmente carregadas pelas formigas, e,portanto, o controle dessa praga é recomendado, bemcomo a correta dobra da folha bandeira para que as
formigas não tenham acesso ao cacho (Melendez, 2019).

14 Fonte: Tirada de Cubillo, 2013
15 Fonte: Tirada de Cubillo, 2013.
16 Ampla gama de famílias: Aizoaceae, Arecaceae, Asclepiadaceae, Asteraceae, Boraginaceae, Cactaceae, Cannaceae, Chenopodiaceae, Convolvulaceae, Crassulaceae, Cruciferae, Euphorbiaceae, Lauraceae, Fabaceae,

Liliaceae, Malvaceae, Musaceae, Nyctaginaceae, Portulacaceae, Proteaceae, Rutaceae, Scrophulariaceae, Solanaceae, Verbenaceae (Williams e Granara-de-Willink, 1992; Ramos e Serna, 2004; Ben-Dov et al., 2013, apud Palma et al.,2019). Em espécies como: Acalypha setosa (Folha de cobre), Cissus sicyoides (Videira princesa), Physalis pubescens (tomate casca, cereja baixa), Piper tuberculatum (Pimenta longa), Rivinia humilis (Rivina), Urera elata (Urtiga) e Zingiber
officinale (gengibre) (Williams e Granara-de-Willink, 1992, apud Palma et al., 2019).

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•

Controle mecânico: Ao serem colhidos, se os cachos apresentarem pragas, a lavagem pressurizada com água é necessária paraeliminar as pragas nos términos dos cachos colhidos.

•

Controle biológico: Diversos inimigos naturais foram determinados, tais como parasitoides, particularmente da família Encyrtidae e
predadores da família Coccinellidae. Outros inimigos naturais são fungos, formigas-leão e ácaros entomopatogênicos. Parasitoides
específicos para cochonilha são Anagyrus kamali Moursi e Gyranusoidea indica (Hymenoptera: Encyrtidae) (Palma et al., 2019).
Koppert, citado por Meléndez (2019), declarou que Anagyrus pseudococci é uma vespa parasita amplamente reconhecida pelo
seu uso no controle biológico das cochonilhas. A espécie Anagyrus spp parasitam diferentes espécies e estágios de cochonilhas.

•

Níveis de tolerância: A base para o manejo é um sistema de amostragem no pseudocaule ou no cacho. Isso permite a definição deáreas com os maiores problemas, a idade do cacho quando a praga está entrando e a opção de manejo pode ser selecionada
prontamente (Cubillo, 2013). Nesse momento, não existe tolerância, uma vez que é uma praga de quarentena.

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Cochonilhas

Informações Gerais: As escalas são insetos que pertencem à ordem Hemiptera e à família Diaspididae (Loor,
2016). A maioria das espécies economicamente relevantes para o cultivo da banana é a Diaspis boisduvalii,
conhecido como cochonilha da banana. Esses insetos podem ter formas circulares, achatadas e ovais,
estreitos, de cor branca até amarelo opaco, semitransparente e entre 1,2 e 2,25mm de diâmetro (Orellana,2007). Elas não são pragas importantes em todos os países produtores de banana; no entanto, a cochonilha
da banana é uma das principais pragas nas produções de banana na Costa Rica e Equador, bem como
nas Filipinas; por essa razão a cochonilha é considerada uma das 43 pragas desse tipo mais severas no
mundo (Miller e Davison apud Solano, 2019; Loor, 206). Seus principais hospedeiros são bananas e bananada-terra (Cota e Saunders, apud Cubillo,2013). É uma praga de quarentena em portos de destino (Cubillo,2013).
Presença da Diapsis boisduvalii em
frutos de banana. 17)

Presença da Diapsis boisduvalii na
folhagem.18•

Sintomas: É um inseto sugador que cobrem com uma camada de proteína (exúvias) e outras
substâncias que fazem uma carapaça, cobertura ou proteção que, embora seja depositada no seu
corpo, pode ser separada disso, constituindo um escudo verdadeiro (Beardsley e González; Guillén eLaprade; Antonelli apud Solano, 2019; Cubillo, 2013). Elas causam lesões côncavas e cloróticas(Vargas et al., 2017).

•

Dano:
o A fêmea adulta e as ninfas das cochonilhas se alimentam da seiva do pseudocaule, folhas dacoroa e engaço da fruta. O fungo Capnodium spp cresce a partir dos excrementos dos
insetos formando a Fumina, afetando a fotossíntese e reduzindo a qualidade de aparência dafruta. A Fumagina faz com que a fruta perda a qualidade da apresentação (qualidade
cosmética), enquanto também causa a necrose das partes afetadas (Pasapera, 2013). Essaslesões causam amadurecimento irregular da fruta.
o Isso aumenta os custos de produção e a rejeição dos frutos da banana na embalagem dasplantas e nos portos de destino.

17 Fonte: González e Cubillo, 201418 Fonte: Solano, 2019

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•

Favorecido por: Geralmente, as condições de altos níveis de precipitação (alta umidade relativa) e altas temperaturas e controle
inadequado das ervas daninhas que agem como hospedeiros alternativos para cochonilhas e formigas; A limpeza inadequada do
pseudocaule (remoção ruim ou inadequada dos revestimentos do pseudocaule); excesso de acúmulo de água em drenos e um alto
lençól freático devido à drenagem inadequada; fertilização nitrogenada em excesso; aplicação de nematicidas ou inseticidas que
afetam a população de seus inimigos naturais.

•

Prevenção:o Remoção profunda dos revestimentos secos do pseudocaule.
o Renovar o pseudocaule, isto é, a cada 6 semanas remover as seções velhas, podres ou secas.
o Eliminação de seções podres ou secas no momento da colheita.
o Aplicação de enxofre na base da planta, do pseudocaule e gema até o engaço (uma prática utilizada para a banana
orgânica no Peru) (Pasapera , a 2013).
o Bom manejo da densidade populacional até a data da remoção das folhas (ciclos conforme apropriado).
o Eliminações de folhas que estão tocando a fruta.
o Separação dos cachos do pseudocaule.
o Implementar uma boa prática de ensacamento precoce, de forma que a pessoa realizando essa atividade evite tocar as
folhas de plantas infestadas.
o Manter drenagem adequada na plantação evitando alagamentos.
o Evitar aplicações de nematicidas e inseticidas que possam afetar os inimigos naturais.
o Evitar aplicar em excesso a fertilização nitrogenada pois pode favorecer a susceptibilidade do aumento de pragas(Hernández , et al., 2011).
o Em algumas fazendas no Equador, os pseudocaules mais afetados são removidos, com cuidado para não propagar ascochonilhas e transmiti-las às plantas restantes na área (Meléndez, 2019).
o Manejo ou controle adequado do mato, uma vez que algumas ervas daninhas podem ser hospedeiras alternativas para
formigas vivendo em simbiose com as cochonilhas e favorecer o aumento de suas colônias ao não permitir que seus
predadores e parasitas regulem suas populações (Loor, 2016).

•

Controle mecânico: No evento da presença de pragas em cachos recém colhidos, é importante lavá-los com água pressurizada
para eliminar a praga das partes terminais dos cachos colhidos.

•

Controle biológico:o Guillén apud Vargas, et al., 2017, indica e confirma que as cochonilhas tem um amplo grupo de inimigos naturais como
vespas parasitas da família Aphytis, predadores da família Coccinelidae (Pentilia sp., Delphatus sp.) e crisopas (Ceraeochrysasp.). Além dessas, as populações da cochonilha da banana ou D. boisduvalii tem sido reguladas por insetos tais como
Chrysoperla sp. (Cubillo, 2013). (Cubillo, 2013).

92
SA-G-SD-9-V1-PTooSolano, 2019 reporta a presença de três espécies parasitas para a cochonilha da banana Diaspis boisduvalii: Hemiptera:
Diaspididae) em plantações de banana (Musa AAA, subgrupo Cavendish) do caribe costarriquenho, que foram identificadas
no nível de gênero como Coccobius spp. (Hymenoptera: Aphelinidae), Plagiomerus spp. (Hymenoptera: Encrytidae) e Aphytis
spp. (Hymenoptera: Aphelinidae) bem como as espécies hiperparasitas agrupadas no gênero Ablerus (Hymenoptera:
Aphelinidae).
Uso de entomopatogênicos tais como Beauveria bassiana eMetarhizium sp se produtos estiverem disponíveis na área(González e Cubillo, 2014).

Níveis de tolerância: Não há nível de tolerância específico; para pragas de quarentena a tolerância é zero. A amostragem érealizada para determinar os períodos de entrada da praga e para determinar a efetividade das medidas de manejo.

93
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Ervas daninhas (diversos gêneros e espécies de planta)
Informações Gerais:• As ervas daninhas são plantas que competem
quantitativamente mas não qualitativamente com os cultivos;
elas são prejudiciais devido aos seus efeitos aditivos(competição) e alelopatia. Além disso, foi comprovado que
algumas ervas daninhas são hospedeiros alternativos de pragas.
Contudo, é desagradável. Várias espécies de mato fornecem
boa cobertura de solo e previnem erosão. Grama em canais dedrenagem ou irrigação são excelentes para a preservar os
declives.
• Além disso, elas adicionam matéria orgânica no solo epermitem a reciclagem e conservação dos minerais do solo;
algumas fixam e todas elas ajudam a manter a vida silvestre e oequilíbrio biológico natural.
•

O manejo do mato deve ser integrado e deve ser
acompanhado de um estudo de cada erva daninha, seus
habitats de crescimento e controle.

•

Sintomas: Entre os efeitos causados pela interferência de ervas
daninhas na produção de banana os seguintes já foram
reportados: redução da altura, grossura do pseudocaule e peso
do cacho; deficiência de nitrogênio causado pela competição
e refletido no amarelamento de folhas jovens; crescimento maislento com alguns chupões; atrasos na florada com
consequente prolongamento do ciclo do cultivo. Produtividade
reduzida.

•

Dano: Um período crítico para competição com as ervas
daninhas é o estabelecimento do cultivo da produção debanana. Um segundo período de competição com as ervas

Paspalum conjugatum Berg. 19

Fonte: Tirada de fr.wikipedia.org.

94
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daninhas ocorre entre a florada ou a brotação do ramo e oenchimento do fruto. Os custos relacionados ao manejo domato são estimados entre 5 e 6% do total de custos deoperação agronômica (Quintero e Carbono, 2015), , bem como
as baixas produtividades em culturas perenes, como a banana,
por volta de 23 a 62%.
Parthenium hysterophorus L.20•

Prevenção: O melhor método para lutar contra as ervas
daninhas é a prevenção através da introdução de novas
espécies no campo, bem como a redução sistemática dobanco de sementes de ervas daninhas no solo. Uma outra
medida é o estabelecimento de um sistema de monitoramento
efetivo.

•

Controle mecânico: Os métodos mais comuns para controle das
ervas daninhas são:- Preparação do solo antes do plantio, que é a base paraeliminação de ervas daninhas perenes, se presentes.
- Controle manual (limpeza), que é uma prática de rotina
eliminar as ervas daninhas entre as ruas das plantas.
- Uso de cobertura morta para o controle de ervas
daninhas e preservação da umidade do solo.
- Uso de cobertura vegetativa intercalada com plantas
de banana; além de ajudar na produção, pode ajudara melhorar a preservação da fertilidade do solo.

•

Controle biológico: Não existem referências conhecidas de uso
prático de controle biológico contra ervas daninhas específicas.

•

Níveis de tolerância: 40 a 60% de cobertura de ervas daninhas.

Cyperus rotundus (L.) Retz 21

20 Fonte: Arquivos pessoais, 2019.
21 Fonte: Tirada de plants.ces.ncsu.edu

95
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Moleque da bananeira
Informações Gerais• O moleque de bananeira (Cosmopolites sordidus Germar;
Coleoptera: Cuculionidae) é considerada uma das mais
importantes pragas do cultivo da banana24. É encontrada
ao longo das áreas tropicais e subtropicais onde banana,banana-da-terra, abacá (Musa textilis) e outras Musaceae
são cultivadas 25.
• O moleque da bananeira adulto é um inseto escuro e tem
medidas de 10 a 15mm; é de vida livre, embora seja maiscomumente encontrado entre os revestimentos dafolhagem, no chão à base da planta ou associados com
resíduos do cultivo26.
Cosmopolites sordidus 22 adulto.

Plantas derrubadas ou caídas devido aos danos causados pelo moleque dabananeira 23•

Sintomas: Wright, apud Ajanel (2003), determinou que aputrefação pode ocorrer em rizomas completamente
perfurados que foram reduzidas à massa escurecida detecido, enquanto as folhas morrem prematuramente. As
plantas infestadas tem uma cor pálida verde amarelada efolhagem macia. Brotações jovens ficam com frequência
murchas e seu desenvolvimento é deficiente.

•

Dano: O moleque da bananeira reduz a produtividadepara um tamanho menor e de qualidade inferior dos
cachos, bem como o atraso na maturação eencurtamento de vida útil das plantações devido à má
qualidade da brotação. Perfurações causadas pelas
larvas desse inseto podem ser utilizadas por outrosorganismos como ponto de entrada, principalmente pela
minhoca Castniomera humboldti (Lepidoptera;
Castaniidae) ou pelos microorganismos tais como

22 Fonte: Gold e Messiaen, 2000
23 Fonte: Pasapera, 201324 Cubillo e Guzmán, 2003.
25 Cubillo, 2013.

Gold e Messiaen, 2000

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Ralstonia solanacearum e Fusarium oxysporum (Ajanel,2003). A presença do apodrecimento causado pela
bactéria de gênero Erwinia sp na muda foi diretamente
proporcional ao dano na muda causado pelos
besouros27.
Danos do moleque da bananeira na muda. (Fonte: Alarcón e Jiménez,2012).

•

Favorecido por: Os besouros ficam ativos durante a noitee são muito susceptíveis a dessecação; portanto preferem
condições úmidas e evitam a luz (Gold e Messiaen, 2000).
Os besouros são atraídos até às plantas hospedeiras pelas
substâncias voláteis emitidas pelas mudas recémcortadas. Além disso, eles podem se alimentar de material
vegetal em decomposição. As mudas deixadas no
campo na plantação são visitadas pelo inseto a noite e os
ovos são colocados antes das mudas serem replantadas,causando a perda do material recém plantado28.

•

Prevenção
o Uso de sementes vigorosas e saudáveis (nãoinfestadas) em boas condições (Ajanel, 2003).
o Submergir as sementes vegetativas ou mudas emágua a 52 - 55°C por 15 a 27 minutos. Esses banhos são
muito efetivos para eliminação de nematoides, masapenas matarão um terço das larvas do moleque dabananeira (Gold e Messiaen, 2000).
o Sempre que possível, as novas áreas de plantio devem
estar livres de resíduos de Musaceae e a presença dos
insetos (Cubillo, 2013).
o Realizar o controle adequado de ervas daninhas.
o Manutenção de solos bem drenados.

Moleque da bananeira adulto parasitado pela Beauveria bassiana. (Fonte:
Ramírez e Torres, 2016)

27 Cubillo e Guzmán, 2003.

28 Cubillo, 2013

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o
o

o
o
o
o

o

Filiação oportuna.
Manter uma adequada nutrição das plantas. Alarcóne Jiménez (2012) recomendaram a correção dedeficiências de boro e potássio.
Manter um sistema de sustentação adequado.
Manejo adequado do sistema de irrigação.
Manejo adequado de outras pragas e doenças.
Não deixar que o pseudocaule se dobre após acolheita, isto é, escorar o pseudocaule após o final dacolheita (Pasapera, 2013).
Para manter baixas populações do besouro, rizomas
velhos devem ser cavados e removidos, bem como os
resíduos de outros materiais vegetativos onde os
besouros podem se reproduzir. A remoção de gemas
e mudas regularmente. Ao coletar o cacho, opseudocaule deve ser cortado próximo do chão(Ajanel, 2003).

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Controle mecânico:ooO uso de armadilhas feitas de pseudocaules ou mudas que funcionam como alimentos atrativospodem ser utilizadas em
altas densidades (25-50 armadilhas/ha). Os insetos são coletados manualmente dessas armadilhas (Cubillo, 2013).
Um alto número de armadilhas de feromônios pode ser utilizado para manejar a redução da população adulta do C.
sordidus e de 6 a 25 armadilhas/ha podem ser colocadas. Esse método pode capturar até 18 vezes mais que armadilhasde pseudocaule (Cubillo, 2013).

•

Controle biológico: As larvas do inseto tem os seguintes predadores: Plaesius javanus, Hololepta quadridentada(Coleoptera: Histeridae) e Dactylosternum hydrophiloides (Coleoptera: Hydrophilidae), e formigas: Pheidole
megacephala, P. guineense, Azteca sp. E Tetramorium guineense (Hymenoptera: Formicidae) (Cubillo, 2013; Gold eMessiaen, 2000). Adicionalmente, nematoides das famílias Heterorhaditidae (Heterorhabditis spp.) e Steinernematidae(Steinernema spp.), atacam tanto besouros adultos como suas larvas no campo (Cubillo, 2013; Gold e Messiaen, 2000).
Ainda, o custo e eficácia desses nematóides permite seu uso apenas quando os besouros são encontrados em altas
densidades populacionais, limitando o uso extensivo. Fungos entomopatogênicos como a Beauveria bassiana e
Metarhizium anisopliae são fontes de controle desse inseto (Cubillo, 2013). Sob condições de laboratório e campo algumas
linhagens de B. bassiana podem causar uma mortalidade acima de 60% (Cubillo, 2013). Outros predadores de larvas e
ovos são Euborellia annulipes Lucas (Dermaptera: Carcinophoridae) e Labia borelli Burr (Dermaptera: Labiidae),Ontophagus sp. (Coleoptera: Scarabaeidae) e Eutochia sp. (Coleoptera: Tenebrionidae) (Navas, 2011). O combatequímico inclui o uso de extratos vegetais com propriedades inseticidas como o Nim (Azadirachta indica A. Juss), quecontém compostos inseticidas tais como fitoalexinas. Musabyimana, apud Navas (2011), determinou que polvilhar pó dassementes de Nim, de 60 a 100 g/planta, no momento de plantio e posteriormente em intervalos de quatro meses por um
período de três anos, foi efetivo no combate desses insetos causando uma interferência na localização do hospedeiro ao
produzir repelentes, reduzir a colocação dos ovos e inibir a alimentação e crescimento nas larvas. Gold e Messiaen (2000)
menciona que a imersão dos brotos em uma solução de 20% de A. indica durante os plantios, protege as plantas jovensde lesões, reduzindo a colocação de ovos através do efeito repelente em besouros.

•

Níveis de tolerância: Não existe um critério unificado em relação a uma tolerância para ação; no entanto, Alarcón eJiménez (2012), indicam 20 a 25 armadilhas por hectare são colocadas, então verificação dois ou três dias após sua
instalação e posteriormente de forma semanal, por não mais que quatro semanas. Durante essas revisões, os insetos
capturados são coletados e contados. Se o número médio dos insetos por armadilhas for maior que 5, uma grandequantidade de armadilhas deve ser instalada para reduzir a população; um inseticida biológico ou em casos extremos,
um inseticida químico deve ser aplicado.

•

Amostragem: Se houver lesões amostradas nas mudas e nos rizomas, medidas de manejo são recomendadas quando
existir uma média >15 lesões (Cubillo, 2013).

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Nematoides
Informações Gerais
Os nematóides são transparentes, animais filiformes com um corpo
não segmentado que é coberto por uma cutícula de hialina, quetem faixas e outras marcas; eles tem um corte transversal, com uma
boca, mas sem extremidades ou outros apêndices (Guzmán, 2011;
Agrios, 2005).
Existem 146 espécies de nematoides reportados em Musaceae,
distribuídos em 43 gêneros. Do total dos nematoides, 10%correspondem a espécies fitoparasitas, representando um
importante fator de redução de muitos cultivos.
De acordo com Araya, apud Salazar, et al., 2012, os fitonematoide
mais devastadores e amplamente disseminados são os
endoparasitas migratórios: Radopholus similis, Pratylenchus coffeae,e o semi-endoparasita Helicotylenchus multicinctus. R. similis (umabroca nematoide) é a mais importante em cultivos de banana.
Portanto, nesse estudo focaremos nas medidas para manejo e/ou
controle de R. similis, que também são aplicáveis para outras
espécies dos nematóides que atacam bananas.
•Lesões causadas por R. similis nas raízes da banana (Fonte: Guzmán, 2011.)

Lesões causadas por P.coffeae nas raízes da banana. (Fonte: Soto, 2008.)

Sintomas: De acordo com o modo de ação das diferentes
espécies, os sintomas variam de mais severos - que é ocompleto arranque da planta, aos menos óbvios, tais como
ciclos de produção prolongados (Morales, 2014). Bayer, apud
Sierra (1993), indica que quando as populações dos
nematoides excedem certos níveis, os sintomas aparecem naparte aérea, tais como amarelamento, murchamento, que éespecialmente forte em momentos críticos, devido aabsorção de água deficiente; com diâmetro reduzido dotalo e redução do número e tamanho das folhas;
crescimento atrasado das filhas, tamanho e peso reduzido
dos cachos, degeneração da plantação e a necessidade
do restabelecimento ou renovação em apenas alguns anos,
perda da ancoragem e possível queda das plantas.

100
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•Lesões superficiais causadas por H. multicinctus nas raízes da banana.
Fonte: Coyne e Kidane, 2019.

•

Plantas de banana arrancadas com danos severos de R. similis. (Fonte:
Licona e Mldonado, n.d.)•Prevenção:oooDano: López, apud Sierra (1993), menciona vários tipos dedanos produzidos por nematoides: eles invadem o sistemaradicular, destruindo-o. reduzem a ancoragem, causando
queda das plantas com a consequente perda do cacho;
drenam a força da planta e causam deficiências
nutricionais; são a porta de entrada de várias doenças
causadas por microorganismos; causam a perda defertilizantes bem como a destruição dos mecanismos dedefesa da planta ao interferir no seu sistema enzimático.
R. similis é a mais abundante e a principal espécie defitoparasitas constituem de 82 a 97% da população denematóides nas raízes e mudas (Guzmán, 2011); e quando
esse fitonematoide não é controlado, ele reduz o peso docacho e a produtividade é reduzida ( t/ha) devido ao efeito
do desenraizamento, entre 60 e 53% na primeira e na
segunda colheita, respectivamente. Mas a redução deprodutividade pode chegar até 80% (Guzmán, 2011).
Favorecido por: Os nematóides são concentrados
principalmente dentro dos primeiros 50cm de profundidade.
Sua mobilidade é mínima, alguns deles sendo capazes deandar por alguns centímetros durante a sua vida, de forma
que a sua difusão ocorre apenas por meios externos, comomaquinário agrícola, água de irrigação, humanos e animais,
entre outros. Eles se movem mais rapidamente quando o solo
está úmido (Sierra, 1993).

Utilizar material de plantio livre de nematóides. Submersão das sementes vegetativas ou mudas em água a 52 - 55°C
por 15 a 27 minutos é recomendada. Esses banhos são muito eficientes para eliminar nematóides (Gold e Messiaen,
2000).
Sempre que possível, utilize plantas obtidas de culturas de tecido in vitro (Sarah et al., 1996).
Antes de estabelecer um cultivo, tente a solarização, isto é, trate o solo com o calor da radiação solar. A exposição
solar ao material ‘descascado’ por duas semanas pode reduzir as populações de nematóides. Contudo, essa técnica

101
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••não deve ser usada em pequenos chupões por serem frágeis e precisarem ser replantados rapidamente (Sarah et al.,1996).
o A preparação ideal do solo deve ser realizada antes do plantio, para melhor crescimento e desenvolvimento dos
sistemas radiculares em solos soltos. Isso resultará em maiores quantidades de raízes e em raízes mais longas, ao
contrário do que aconteceria em solos pesados e compactados.
o Constante incorporação de condicionadores orgânicos bem processados como esterco de frango, polpa de café,vermicomposto, bokash, cinzas, esterco de porco, etc., promoverão a saúde das raízes e o vigor nos cultivos deMusaceae permitindo que elas compitam melhor contra os nematoides.
o Aplicar uma fertilização balanceada para as plantas.
o Fornecer camadas adequadas de água através do sistema de irrigação, de acordo com as demandas do cultivo.
o A aplicação de lixiviados de de banana ou banana-da-terra pode reduzir as populações de nematóides
fitoparasitas, mas seu mecanismo de ação ainda não está claro (Salazar et al., 2012).
o A terra onde as plantas de Musaceae foram produzidas deve ser deixada em pousio por seis meses ou mais, até dois
anos, para que possa descansar. Sarah et al., 1996 indicou que as populações de nematóides podem ser reduzidas
até níveis imperceptíveis após um único ano de pousio, utilizando culturas não hospedeiras tais como Chromolaena
odorata (Asteracea), que é muito eficiente na África e Panicum maximum (Poaceae) em Queensland (Austrália)(Coyne e Kidane 2019). Na Costa do Marfim a rotação com o abacaxi (Ananas comosus) contribuiu para a redução
das populações de R. similis (Coyne e Kidane, 2019) e rotação com a cana de açúcar (Saccharum officinarum) foi
de certa forma bem-sucedida na América Central (Coyne e Kidane, 2019).
Controle mecânico: Considerando que R. similis sobrevive em mudas e raízes infectadas, fazer a remoção das camadas
externas de rizomas ‘descascados’ para eliminar o tecido infectado e reduzir as populações de nematóides.; além disso essa
prática permite a inspeção do tecido branco para detectar a presença do moleque do bananeiro. Limpeza sanitária dasmudas ao “descascá-las” deve ser realizada fora dos campos e mudas danificadas de forma severa já em necrose devem
ser descartadas. Apenas mudas limpas devem ser utilizadas para o plantio (Guzmán, 2011).
Controle biológico: Os fungos entomopatogênicos mais comummente utilizados contra oR. similis na cultura de banana sãoprovavelmente aqueles baseados no Purpureocillium lilacinus (anteriormente conhecidos como Paecilomyces lilacinus).
Existem muitos produtos e formulações comercialmente disponíveis. Os fungos atacam os ovos, jovens e adultos. Os
resultados variam dependendo das condições, no entanto, em geral, demonstram um bom nível de controle e são
financeiramente viáveis. Foi demonstrado que a invasão das raízes da banana pelo R. similis é inibida por bactérias
entomopatogênicas como as espécies Bacilus, tais como B. firmus e B. subtilis, bem como aPseudomonas fluorescens (Coynee Kidane, 2019). Pasteuria spp., que é uma bactéria parasita para nematóides difere no que diz respeito ao alcance dehospedeiros e sua patogenicidade em relação aos nematóides. Foi concluído que a Pasteuria penetrans é um parasita do R.
similis (Coyne e Kidane, 2019) mas essa espécie não foi totalmente desenvolvida como um agente contra essa praga. Vários
testes foram realizados sobre o uso e inoculação do fungo endofítico (Trichoderma spp. E Fusarium spp.) em viveiros devitroplantas com resultados promissores. De acordo com Meneses (2003) e Morales (2014), os fungos endofíticos Trichoderma

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spp. E Fusarium spp. Causam de 75% a 100% de redução nas populações de R. similis. Resultados melhorados foram obtidos
ao combinar espécies de bactéria. Além disso, as plantas desenvolveram maior peso radicular e crescimento superior
quando estavam livres de nematoides. Por último, efeitos promotores de crescimento nas plantas causados pelo fungo
Micorriza não apenas forneceram benefícios potenciais para a banana, mas também demonstraram reduzir a infecção e os
danos do R. similis (Coyne e Kidane, 2019). Densidade total de R. similis reduzida em 60% e a necrose radicular em 56% em
mudas de banana colonizadas com o fungo arbúsculo micorriza em condições de estufa (Coyne e Kidane, 2019). No
entanto, como foi repetidamente observado ao avaliar e aplicar agentes de controle biológico, as relações podem ser
muito específicas dependendo da variedade hospedeira e a espécie de agente de controle e sua linhagem (Coyne e
Kidane, 2019). Com respeito ao controle químico com produtos naturais, formulações de Nim (Azidirachta indica) sedestacam ao proporcionar um bom manejo de nematóides na banana (Coyne e Kidane, 2019). Foi demonstrado que
produtos à base de gergelim, misturas de óleos essenciais contendo gergelim ou alho, furfurais e produtos com base deMyrothecium verrucaria são muito tóxicos para nematóides e podem fornecer uma redução bastante promissora de R. similis.
•

Níveis de tolerância: Os limites para iniciar a aplicação de nematicidas dependerão dos parâmetros locais, tais como clima
e condições do solo e agressividade do patógeno. Para que esse exercício valha a pena, a verificação deve ser baseada
em resultados precisos da contagem de nematóides. Os nematóides precisam ser extraídos do material vegetativo e do solo
ao seu redor utilizando protocolos aprovados (Coyne e Kidane, 2019). Na osta norte da Guatemala, estão definidos os níveis
críticos ou limites de ação a seguir:o Peso radicular funcional abaixo de 50g/planta.
o Porcentagem de raízes mortas maior que 10%.
o Populações de nematóides entre 30,000 e 40,000 R. similis/100 g de raiz.
o Desenraizamento maior que 3 plantas/ha/semana.
o Redução do peso do cacho maior que 10%/período de seis meses.

Em outros países centro-americanos (incluindo Costa Rica) e América do Sul, o nível de população de 10.000 espécimes/100g deraiz é utilizado.

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DOENÇAS COMUNS NA BANANA
Sigatoka negra (Mycosphaerella fijiensis)
Informações Gerais
A sigatoka negra é causada por um fungo (Mycosphaerella fijiensis) que ataca bananas e banana-daterra. Está presente ao longo dos trópicos. Sua disseminação é feita pelo vento, água ou por humanos
carregadores. É uma doença policíclica, que sempre estará presente em um cultivo permanente. A
reprodução é por meios assexuais (conídia) e sexuais (ascósporos).

Amadurecimento precoce da fruta devido
a problemas com Sigatoka Negra29.

•

Sintomas: O fungo ataca principalmente as folhas e é caracterizado por um alto número defaixas e pontos, particularmente notados do lado de baixo das folhas. Todos os estágios dadoença serão encontrados na plantação; os sintomas iniciais são faixas virtualmente
imperceptíveis que se desenvolverão aos estágios posteriores com sintomas de necrose equeima da área foliar.

•

Dano: É a mais destrutiva das doenças foliares e é uma das maiores perdas econômicas decultivo em banana. Sem medidas de controle, as perdas podem chegar a 50% da
produtividade e até 100% da produção devido a problemas de qualidade para exportação. Os
custos para o manejo dessa doença são altos - entre 15 e 18% dos custos totais de produção.

•Condições predisponentes: Alta temperatura, altos níveis de precipitação, alta umidade,drenagem inadequada e nutrição deficiente.

•

Prevenção: Ações preventivas são focadas no monitoramento constante e manejo apropriado
das práticas culturais:o Nível nutricional adequado na plantação; elementos como silício, cobre, cálcio, boro ezinco contribuem para a redução da severidade da doença 32.
o Promover condições de umidade ideal no solo (evitar acúmulo excessivo, como
alagamentos).
o Manejo adequado do mato ou controle para prevenir maior acúmulo de umidade.

29 Fonte: Arquivos pessoais, 2019.
32 Guzmán & Paladines, n.d

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Uma planta de banana sem folhas
funcionais devido ao mau manejo da
Sigatoka Negra.30

ooUma planta de banana que está pronta
para a colheita e que perdeu toda sua
folhagem devido ao mau manejo da
Sigatoka Negra31.

Evitar perda desnecessária de folhas devido a outras causas ou práticas (desfolha
protetiva, desfloração, ensacamento, colheita); devem ser evitadas tanto quantopossível.
A aplicação de uma mistura ou 10% de solução de ureia nas folhas com sigatoka que
estejam no chão, portanto, acelerando a decomposição da matéria vegetal e
reduzindo o inóculo.

•

Controle mecânico:o Apara, consistindo no corte da porção apical da folha.
o Cirurgia, uma prática que apenas elimina a área afetada da folha.
o Delaminação, onde a metade longitudinal da folha é removida devida a alta infecçãoda área foliar.
o Ao menos, uma desfolha sanitária ou poda da sigatoka deve ser realizada para preveniro acúmulo de tecido necrosado afetado pelo fungo da sigatoka; se necessário, dois
ciclos de desfolha por semana devem ser executados.

•

Controle biológico: Linhagens QST 713, FZB24, MBI600 e D747 de Bacillus amyloliquefaciens (sin. B.
subtilis) ou Melaleuca alternifolia (FRAC, 2018)•

Níveis de tolerância:
o Posição da faixa na folha 8 (HJE)o Posição dos pontos na folha 12 (HJMT)o Número de folhas em florada ou partição 12o Número de folhas para colheita 6 folhas
o .5. Severidade da doença maior que 1

30 Fonte: Ronny Mancilla, 2019
31 Fonte: Ronny Mancilla, 2019.

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Moko da bananeira (Ralstonia solanacearum)
Informações Gerais
Essa importante doença da banana é causada pela bactéria Ralstonia solanacearum raça 2, que é um
habitante natural do solo. As bananas triploides são atacadas ao menos por 4 tipos da raça 2: D, ou
distorção; B ou Bananas; SFR (Semifluido circular) e H.

Sintomas externos de Moko. (Fonte:
Tirada de Dita, 2020.)•

Sintomas: Devido a ser uma doença sistêmica, os sintomas podem aparecer em qualquer estágio
fenológico do cultivo e em todos os órgãos da planta, das raízes ao cacho, podem ser infectados e
exibir sintomas. Os sintomas externos consistem no murchamento e amarelamento da planta, as
folhas mais jovens se secam e quebram sem cair da planta, e as folhas sofrem necrose. Chupões emudas de plantas doentes podem permanecer pequenos, tortos ou escurecidos. As bordas das
folhas se secam e uma intensa faixa de amarelamento surge. Cachos e frutos deformados, algumas
frutas amadurecem prematuramente, e os frutos se abrem quando o cacho está muito desenvolvido.
A gema masculina se seca seguida pela haste até que todo o cacho se seque (Alarcón y Jiménez,2012).

•

Dano: O Moko é uma das principais doenças que atacam as produções de banana e pode causar
grandes perdas econômicas se não for adequadamente manejado. O moko destruiu os cachos e
impede que a planta complete seu ciclo vegetativo. (Martínez and García, 2004, apud Álvarez et al.,2013).

•

Condições predisponentes: A bactéria é transmitida ou disseminada por ferramentas infectadas
utilizadas nos tratos culturais, insetos vetores e resíduos do cultivo ou materiais infectados, solo
infestado, contato das raízes de plantas doentes com plantas saudáveis causadas por populações
de nematoides se movendo de uma planta para outra, e através do plantio em áreas infestadas. A
bactéria pode se disseminar através da enxurrada de água em canais, rios e córregos, pelomaquinário, em ervas daninhas hospedeiras, e em geral, por qualquer meio móvel introduzido por
humanos (Alarcón e Jiménez, 2012; Álvarez et al., 2013).

•

Prevenção: Mecanismos de prevenção disponíveis são o uso de sementes limpas. Desinfecção dos
calçados dos visitantes e das ferramentas de trabalhadores no momento da desfolha; remoção do

Amadurecimento prematuro de
Moko em um cacho de banana(Fonte: Arquivos pessoais, 2001. )106
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material vegetativo hospedeiro33 e sinalização dos locais afetados (Mesa e Triviño, 2007, apud Álvarez
et al., 2013).

Sintomas internos de Moko (Fonte:
Dita, 2020.)•

Controle mecânico: Erradicação das plantas com sintomas de doenças. Erradicação dos casos deMoko, englobando a eliminação de todas as plantas doentes e todas as plantas vizinhas em um raio
de 5,5 metros. Cada planta doente dentro do raio de 5,5 metros causará um novo caso, portanto,
novas plantas dentro de um outro raio de 5,5 metros devem ser removidas.

•

Controle não-químico: Arenas et al., 2004, apud Álvarez et al., 2013, determinam que a população
da bactéria R. solanacearum pode ser reduzida em 84,7% com a adição de tagetes (Tagetes patula)
ao solo. Além disso, as bactérias patogênicas no solo foram significativamente reduzidas após aaplicação de outras fontes, tais como 58,2% de controle com fertilizante líquido (composto de 2,7%de nitrogênio, 1,7% de fósforo, 5% de potássio, 12% de ácidos fúlvidos e 5% de substâncias de humus);a redução de 50,8% após adicionar Calfoz e 31,6% com a secreção da banana compostada.

•

Níveis de tolerância: O aparecimento em uma única planta requer a erradicação. A quarentena
deve ser estabelecida quando 5 ou mais casos em um único cabo aparecerem dentro de um
período de 6 meses ou menos.

33 Ervas daninhas portadoras da variante que causa danos ao cultivo, a seguir:

Heliconia latispatha, H. caribae, H. acuminata, H. imbricata, H. bihai, Brassica campestris, Datura stramonium, Solanum caripense, Solanum nigrum, Cyphomandra betacea, Lycopersicum sculentum, Photomorpe peltata & Physalis anguiata.

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Podridão Basal (Fusarium oxysporum f.s. cubensi raça 4) (TR4)
Dita et al. (2017) indicam que a Podridão Basal na Musaceae (também conhecida comoDoença do Panamá devido a seu impacto no início do século XX nessa região) é causadapelo fungo Fusarium oxysporum f. sp. cubense (Foc). Essa é a doença mais destrutiva nas
Musaceae (a família que inclui as bananas e as bananas-da-terra) e é considerada estar
entre as dez doenças mais significativas na história da agricultura. Nas Américas, a raça 1
causou uma epidemia que impactou a indústria de exportação da banana, que ébaseada na variedade Gros Michel, e causou a destruição de mais de 379.000 hectares
apenas na América Central (May e Plaza, 1958; Stover, 1972) com impacto econômico deaproximadamente 2,3 milhões de Dólares nas décadas de 50 e 60. A substituição da ‘Gros
Michel’ por clones resistentes do subgrupo Cavendish, que atualmente representam quase
todas as bananas de exportação plantadas nas Américas, foi a única solução para oproblema.
Por um longo tempo, os clones do subgrupo Cavendish foram afetados pelo patógeno
apenas em condições de estresse nutricional e baixa temperatura, tais como aquelas vistas
nas bananas produzidas em regiões subtropicais. Contudo, no início dos anos 90, uma nova
raça foi reportada no sudeste asiático, conhecida como raça tropical 4 (R4T), que ataca as
variedades do grupo Cavendish de forma severa sob condições tropicais. A rápida
disseminação dessa raça e de sua capacidade patogênica são sérias ameaças para a
indústria de banana latino-americana e caribenha. Um fator adicional a considerar é que a
Foc R4T pode afetar outras variedades importantes para a segurança alimentar e geração
de renda além das variedades do grupo Cavendish, entre as quais podem estar: bananada-terra (AAB), Plátano (ABB) Gros Michel (AAA), Prata (AAB) e Maçã (AAB. Considerando oprecedente exposto, com a Foc R4T entrando na Colômbia em 2019, o restante docontinente americano foi colocado sob essa ameaça, que pode impactar a segurançaalimentar da região.
No sudeste asiático, vastas áreas plantadas com variedades do subgrupo Cavendish foram
afetadas pela Foc R4T, causando perdas multimilionárias. Os danos não são associados
apenas com as perdas das plantas doentes, mas também com os custos das medidas demanejo necessárias e as alterações tecnológicas que foram necessárias para minimizar o
impacto da doença.
A exclusão (impedir a entrada) é a melhor opção para evitar o impacto da Foc R4T na
produção de Musaceae em um dado país. Uma vez que a praga adentra uma área,medidas fitossanitárias severas devem ser implementadas para prevenir o movimento do
patógeno de áreas infectadas para não infectadas. Essas medidas estritas são custosas edemandam pessoal treinado no reconhecimento e no manejo de pragas.
Sintomas de Podridão Basal.
O termo e o conceito de raça foi usado para classificar as linhagens de F. oxysporum f. sp.
cubense após os anos 50 (Stover, 1962). Suas raças foram nomeadas com base na
patogenicidade de diferentes variedades de referência sob condições de campo. Quatro
raças patogênicas foram descritas (Stover e Waite, 1960; Stover, 1962; Moore et al., 1993; Suet al., 1998).
A Raça 1 ataca clones de Gros Michel (AAA), Maçã (Silk, AAB), Prata (AAB) e Maçã; a Raça
2 afeta o Plátano e outros clones de genoma ABB; a Raça 3 , que foi descrita anteriormente(Stover, 1962; Waite e Stover, 1960) ataca a helicônia (Heliconia spp.); e a Raça 4 é um
patogênico para Cavendish e todas as variedades susceptíveis as Raças 1 e 2 (Dita et al.,2017).
Os sintomas típicos da Podridão Basal resultam de estresse hídrico severo causado pelo
entupimento do xilema e da combinação das atividades patogênicas como o acúmulo demicélio, produção de toxinas e/ou respostas defensivas do hospedeiro, incluindo a108

produção de tilose e goma e a destruição de vasos devido ao crescimento associado decélulas parenquimatosas (Beckman, 1990; Xiao et al., 2013).
As diferentes raças causam sintomas similares em Musaceae; portanto, as raças não podem
ser diferenciadas com base na semiologia (Stover, 1962; Ploetz, 1990; Ploetz e Pegg, 2000).
A doença é caracterizada por dois tipos de sintomas externos: a ‘síndrome’ doamarelamento da folha e a ‘síndrome’ da folha verde (Stover, 1962; Pérez-Vicente, 2004).
‘Síndrome’ do amarelamento da folha: é o sintoma externo mais clássico e distintivo daPodridão Basal nas bananas. O início do processo de infecção é caracterizado pelo
amarelamento das bordas das folhas mais velhas (esse sintoma pode ser inicialmente
confundido com deficiência de potássio, particularmente sob condições frias e secas). O
amarelamento das folhas progride das folhas mais velhas para as mais novas.
Eventualmente, o pecíolo se dobra e as folhas colapsam ou, mais comumente, as folhas se
dobram em direção ao nervo central e ficam penduradas no pseudocaule, formando uma
saia de folhas mortas.
“Síndrome” da folha verde: Ao contrário da síndrome do amarelamento da folha, nas folhas
de alguns clones de plantas afetadas predominantemente permanecerá verde até que os
pecíolos se dobrem e as folhas colapsem.
Em geral, as folhas mais jovens são as últimas a mostrar os sintomas e frequentemente
permanecem eretas, dando a planta uma aparência ‘pontiaguda’. Uma planta infectada
continuará crescendo e dando folhas geralmente mais pálidas que as folhas saudáveis. A
lâmina das folhas emergentes pode estar consideravelmente reduzida, murcha e distorcida.
Rachaduras longitudinais podem se desenvolver no pseudocaule. Não existem evidências
dos sintomas nas frutas.
Os sintomas internos são caracterizados por coloração vascular, que se inicia com oamarelamento do tecido radicular e basal, progredindo a formar uma faixa continuamente
colorida em amarelo, vermelho ou parda no pseudocaule, que é típico para a doença. Em
clones muito susceptíveis, faixas coloridas nos pecíolos das folhas podem ser observados.
Em alguns casos, a Podridão Basal pode ser confundida com o Moko da bananeiracausado pela Ralstonia solanacearum raça 2. Os seguintes critérios podem ser utilizados
para diferenciar essas duas doenças:

•
•
•
•

Na Podridão Basal, os sintomas progridem das folhas mais velhas para as mais
jovens. No Moko, os sintomas geralmente progridem das folhas mais jovens paraas mais velhas.
Na Podridão Basal, novos brotos emergentes do rizoma estão distorcidos e
podres e podem morrer. Na Podridão Basal, os brotos novos e crescentes não
mostram sintomas.
No Moko, a exsudação bacteriana é vista em todos os tecidos quando cortados(raízes, pseudocaule, hastes, flores e rizoma, etc.). Na Podridão Basal não existe
exsudação.
No Moko, existe uma necrose interna e apodrecimento do fruto, enquanto na
Podridão Basal não existem sintomas aparentes na fruta. (Dita et al. 2017).

Prevenção
Linhas de ação para prevenir a entrada de patógenos nas fazendas (exclusão):O R4T pode permanecer no solo por várias décadas, mesmo se bananas não forem
produzidas. Atualmente não existem medidas conhecidas efetivas para a erradicação dosolo contaminado (Ploetz 2018, apud Guzmán et al., 2018). Os países que ainda estão livres
dessa raça patogênica podem continuar dessa forma com esforços conjuntos paraexclusão do patógeno. A implementação de medidas básicas de prevenção em fazendas
como o acompanhamento pode contribuir substancialmente para a redução do risco deentrada e disseminação:

109

•
•
•
•

•
•
•

•
•
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•

•
•

•
•

•

•
•

Biossegurança da fazenda.
Utilizar material de plantio livre de doenças.
Manejo de fatores bióticos que favorecem a doença, como o ataque de besouros e
nematóides.
Manejo dos fatores abióticos do solo, pH, nutrição [P, Ca, Zn & N], silício, uso de recursosde N para aumentar NO3 e reduzir NH4, cálcio, uma vez que a calagem aumenta asupressividade do solo e reduz a germinação de Clamidósporos (Höper et al., 1995; Peng
et al., 1999); ferro, uma vez que a redução da disponibilidade aumenta a supressividade
do solo (Scher e Baker, 1982) e reduz a germinação de Clamidósporos (Peng et al.,1999), manutenção adequada da rede de drenagem.
Fertilização orientada para a saúde do solo (matéria orgânica + microorganismos
benéficos que suprimem o patógeno e/ou promovam o crescimento da planta, etc.)
composto, adubação verde.
Solos ácidos (pH <5,0) e mais favoráveis para a doença; pH acima de 5,6 é menos
favorável para o fungo.
No momento, nenhuma variedade tolerante e/ou resistente ou híbridos estão disponíveis
no mercado, que forneçam qualidade adequada de fruta aceitáveis ao mercado. Em
Taiwan os clones GCTV 119 e GCTV 218 com resistência parcial são utilizados; contudo,
eles são infectados novamente com o passar do tempo.
A rotação de cultivos com plantas não hospedeiras do R4T, embora essa prática nãoseja possível para plantações comerciais.
Utilização de cultivo de cobertura (Dita, 2020).
Manter um registro atualizado de todas as pessoas que entram na fazenda.
Restringir as pessoas não autorizadas de entrar na fazenda e não permitir a entrada depessoas que estiveram em países com Foc R4T nos últimos três meses.
Se por alguma razão for estritamente necessário que uma pessoa como a indicada
acima entre na fazenda, deve-se cumprir com um protocolo de biossegurança,
incluindo: utilização de calçados fornecidos pela fazenda, limpeza das roupas e
proibição de uso de ferramentas ou equipamentos que foram previamente utilizados em
países que tenham o Foc R4T, os quais não obstante devem ser desinfetados
antecipadamente. Todas as ferramentas devem ser fornecidas pela fazenda.
As fronteiras e a entrada principal da fazenda devem ser protegidas com cercas ou
defesas para garantir que as pessoas se movam apenas em áreas seguras.
Nos pontos de entrada principais (incluindo na unidade de embalagem) a prática dedesinfecção dos calçados deve ser mandatória e estas devem ser mantidas limpas eem boas condições. Adicionalmente, estabelecer locais para desinfecção de veículos(lavagem de pneus) e túneis de desinfecções são altamente recomendados.
Antes de entrar na fazenda, os visitantes devem trocar seus calçados por botas deborracha de cano alto fornecidas pela fazenda, que foram bem limpas e desinfetadase preferencialmente que não sejam da cor preta.
Os trabalhadores devem ser treinados em métodos de prevenção de doenças. Instruçdeve incluir a desinfecção mandatória das ferramentas antes de ir aos campos eperiodicamente durante o dia de trabalho. Desinfecção tanto da lâmina quanto docabo das ferramentas deve ser considerado, bem como outros utensílios como bainhas,
limas, cordas, estacas entre outras. As ferramentas devem ser usadas exclusivamente na
fazenda; portanto, removê-las da fazenda deve ser proibida a menos que tal prática
seja totalmente autorizada e medidas de biossegurança tenham sido tomadas.
Os trabalhadores devem ser treinados e informados sobre os sintomas da doença. Eles
devem ser instruídos a informar os administradores da fazenda se plantas com quaisquer
sintomas da Foc R4T forem detectadas e quais procedimentos devem ser seguidos. Os
trabalhadores não devem ignorar uma suspeita.
Qualquer tipo de maquinário ou equipamento agrícola a ser utilizado na plantação
deve ser muito bem lavado e desinfetado antes de entrar ou sair da fazenda.
Os desinfetantes com eficiência comprovada contra o patógeno devem ser usados
para desinfetar as ferramentas, maquinários e equipamentos agrícolas e na desinfecção
de calçados (tirado de Guzmán et al., 2018).

110

Dosagem recomendada (mg/L)1
Efeito residual em até sete dias.
Tipo de desinfetantePara uso na desinfecção deferramentas.

Para uso na desinfecção decalçado e equipamentos
agrícolas.

2.000

4.000

Iodophor

2.000

4.000

Glutaraldeído

1.000

3.000

Sal
quaternário
amôniode

1/. Doses recomendas para sua eficácia na eliminação de Clamidósporos com base nos estudos realizados pela

CORBANA para Foc raça 1 com alta concentração de inóculos, solo e matéria orgânica. Fonte: Guzmán et al.,
2018.

Monitoramento
Essa atividade é realizada única e exclusivamente em países e/ou fazendas que tenham o
R4T com intuito de caracterizar a incidência de Foc R4T nas áreas afetadas (Dita et al., 2017).
No entanto, cada fazenda deve ter pessoal técnico treinado nos sintomas de Foc R4T paraque as plantas com sintomas similares dessa doença sejam prontamente detectadas (plantas
suspeitas). Tais plantas devem ser isoladas e confinadas para prevenir o risco de disseminação
do fungo e as autoridades do Ministério da Agricultura em cada país devem serimediatamente notificadas para que a confirmação com o diagnóstico molecular possa ser
feito.
Controle e intervençãoAssim como o monitoramento, as atividades de controle são realizadas única e
exclusivamente nos países e/ou fazendas que tenham o Foc R4T para conter, suprimir eerradicar casos detectados (Dita et al., 2017).
Para maiores informações sobre o monitoramento controle e intervenção, o documento da
OIRSA é recomendado com base de um plano de contingência ao enfrentar uma
infestação da raça 4 tropical (Foc R4T). Este documento completo inclui todas asorientações legais, técnicas e científicas para o manejo do Foc R4T, com medidas deexclusão, supressão e erradicação. O documento foi preparado e é atualizado com
frequência por profissionais especialistas nesta doença. Disponível em:
https://www.oirsa.org/contenido/2018/Sanidad_Vegetal/Manuales OIRSA 20152018/Plan_conting_FOC_R4T_2017-V2-Final-FEB18-2017.pdf

111

Figura 1: Sintomas externos de Podridão Basal na banana.

A. Planta com clorose generalizada nas folhas (síndrome da folha amarela) em
um estágio avançado da doença.
B. Rachaduras na base do pseudocaule.
C. Planta afetada pela Podridão Basal com folhas verdes (síndrome da folha
verde).
D. Visão detalhada das folhas se partindo na base do pecíolo.
(Fonte: Dita et al., 2017)112

Figura 2: Sintomas internos da Podridão Basal na banana.

A. Rachadura no rizoma mostrando necrose do tecido.
B. Corte no pseudocaule, mostrando necrose avançada do tecido vascular.
C. Secção longitudinal no pseudocaule, mostrando faixa de necrose do tecido
vascular.
Figura 3: Infográfico dos sintomas do Foc R4T.

Podridão Basal Raça 4 Tropical (Foc
R4T).

Sintomas:
Amarelamento
das folhas.

Coloração
internamarrom éobservada.

As folhas
afetadasestão
completa
mente
A base domurchas e
pseudocaulependuradpode rachar.
as na
planta.
Se quaisquer
destes sintomas for suspeito, imediatamente contate o
Ministério da Agricultura de seu país.

Fonte: Infográfico do Curso da OIRSA sobre Foc R4T.

113

Referências
Alarcón, J; Jiménez, Y. 2012. Manejo fitosanitario del plátano (Musa spp.): Medidas para latemporada invernal. Instituto colombiano agropecuario. Bogotá, Colômbia. 51 p.
Álvarez, E; Pantoja, A; Gañan, L; Ceballos, G. 2013. Estado del arte y opciones de manejodel moko y la sigatoka negra en América Latina y el caribe. CIAT/FAO. Cali, Colômbia. 45 p.
Cubillo, D. 2013. Manejo integrado de plagas: conceptos y aplicaciones. Chemplast
International Corp., San José, Costa Rica. 105 p.
Cubillo, D. 2013. Manual para el conocimiento y manejo de las principales plagas insectiles
en el banano orgánico. III curso internacional de banano orgánico. Piura, Peru. 24 p.
Dita, M. 2020. Marchitez por Fusarium de las musáceas. Detección y Diagnóstico raza 4
tropical – R4T. III jornada fitosanitaria virtual. Taller de capacitación regional sobre lamarchitez por Fusarium de las Musáceas, raza 4 tropical. OIRSA. 58 p.
Dita, M. 2020. Marchitez por Fusarium, raza 4 tropical: escenarios y alternativas de manejo. III
jornada fitosanitaria virtual. Taller de capacitación regional sobre la marchitez por Fusariumde las musáceas, raza 4 tropical. OIRSA. 76 p.
Dita, M; Echegoyen, P; Pérez, L. 2017. Plan de contingencia ante un brote de la raza 4
tropical de Fusarium oxysporum f.sp. cubense en un país de la región de OIRSA. OIRSA. San
Salvador, El Salvador. 211 p.
Dita, M; Pérez, L. 2013. Mal de Panamá: historia, síntomas, conceptos de razas, importancia
económica, situación actual de la raza 4 tropical. Curso de capacitación sobre diagnósticoy manejo del Mal de Panamá de las musáceas (Fusarium oxysporum f.sp. cubense) creando
capacidades para la prevención de la entrada y detección temprana de la raza 4 tropical.
Santa Marta, Colômbia. 68 p.
FRAC, 2018. Minutas de la reunión del grupo de trabajo de banano. Miami, USA. 21 p.
González, M; Cubillo, D. 2014. Guía de manejo de plagas. Lista verde y amarilla. Cochinilladel banano. CABI/Chemplast/CATIE. Costa Rica. 1 p.
Guzmán, M; Pérez, L; Villalta, R; Carr, C; Sandoval, J. 2018. Marchitamiento por Fusarium raza
4 tropical (Foc R4T) una seria amenaza para la producción de bananos y plátanos:
recomendaciones para prevenir el ingreso del patógeno en fincas bananeras. CORBANA.
Guápiles, Costa Rica. CORBANA 44(64):1-8. 2018. 8 p.
Guzmán, M.; Paladines, R. (s.f.). Sigatoka negra. CropLife Latin America. Consultado 16 jul.
2020. Disponible en https://www.croplifela.org/es/plagas/listado-de-plagas/sigatoka-negra
Hernández, E; Camero, A; Velázquez, Y; Ramos, C. 2011. La cochinilla de la platanera.
Agrocabildo. Islas Canarias. 6 p.
Meléndez, G. 2019. Manejo y prevención de cochinilla (Pseudococcus sp.) en el racimo debanano en la hacienda María José 1, zona de Babahoyo. Tesis Ingeniero Agrónomo.
Equador. Universidad Técnica de Babahoyo. 38 p.
Palma, M; Blanco, M; Guillén, C. 2019. Las cochinillas harinosas (Hemiptera:
Pseudococcidae) y su impacto en el cultivo de Musáceas. Agron. Mesoam. 30(1):281-298,
enero-abril, 2019. San José, Costa Rica. 18 p.
Pasapera, E. 2013. Manejo integrado de plagas en banano orgánico. MINAGRI. Piura, Peru.
13 p.
Palacino, J. 2020. Programa de control y manejo de Fusarium R4T. Lecciones aprendidas en
Colômbia. III jornada fitosanitaria virtual. Taller de capacitación regional sobre la marchitez
por Fusarium de las musáceas, raza 4 tropical. OIRSA. 16 p.
Quintero, I; Carbonó, E. 2015. Panorama del manejo de malezas en cultivos de banano en el
departamento de Magdalena, Colombia. Revista colombiana de ciencias hortícolas, Vol. 9,
No. 2: pp. 329-340.

114

INIMIGOS NATURAIS DA BANANA (MUSA AAA) PRAGAS E DOENÇAS
Mealybugs/ Planococcus citri Riss/ Dysmicoccus brevipes Cokerell /Pesudococcus jackbeardsleyi Gimpel e iller/Pesudococcus
elisae Borchsenius/ Ferrisa virgata Cokerell.
Cochonilhas• As cochonilhas tem um grande número de inimigos naturais, infelizmente a aplicação de pesticidas
afeta as populações desses agentes de controle biológico. Focaremos nos inimigos naturais
considerados de maior importância:

Cryptolaemus montrouzieri
adulta34

Cycloneda
spp.
capturando um afídeo35•

Predadores : dois coccinelids, Cryptolaemus montrouzieri e Cycloneda spp e um neuróptero (Chrysopa
spp.) (Cubillo 2013).

•

Cryptolaemus montrouzieri é uma espécie polifágica. A larva pequena e os adultos preferem sealimentar dos ovos da cochonilha, enquanto as larvas mais velhas dão preferência às cochonilhas dequalquer estágio.

•Cycloneda spp.: é uma espécie polifágica, predadores vorazes de insetos de corpo macio como
afídeos, cochonilhas, ácaros, Coccídea, e estágios imaturos de lepidóptera e Homoptera, elas também
se alimentam do melado e do néctar das flores. Eles dependem da densidade e, portanto, são capazesde mudar de uma área para outra em que a presa esteja mais abundante. Preferem o lado de baixo
das folhas, quase sempre próxima de uma colônia de afídeos ou outras pragas. É um inseto predador
muito eficiente e um agente de controle biológico graças à sua voracidade, resposta funcional e
resposta numérica. Sua pupa tem a incrível habilidade de ‘morder’ uma presa em potencial 39.

AdultaFormiga-leão
• Chrysopa spp.: A voracidade das larvas as torna um dos agentes de controle biológico mais favoráveis
para os cultivos agrícolas.40
Chrysopa spp. adulta36•

Larvas de todas as espécies e adultos de alguns gêneros são predadores e se alimentam de uma
grande variedade de insetos fitófagos tais como cochonilhas, afídeos, pulgões e outros insetos de corpo

34 Fonte: controlbiologico.info - Cochinillas
35 Fonte: Pesquisa de imagens no Google.
36 Fonte: https://upload.wikimedia.org/wikipedia/commons/thumb/9/99/Chrysopa_perla01.jpg/250px-Chrysopa_perla01.jpg.
39 EcuRed 2020
40 Oswald et al., apud Valencia et al. 2006115

macio encontrados na folhagem. Por essa razão, algumas espécies estão atualmente sendo produzidos
em escala e sendo liberados no campo para o controle biológico de pragas agrícolas 41.

Cycloneda spp. Larva
capturando um afídeo37

Allotropa musae adulta 38•

Chrysoperla spp.: da mesma família que a Chrysopa spp. Chrysoperla spp.

•

Suas larvas foram observadas predando mais de setenta tipos diferentes de espécies de insetos
pertencentes a cinco ordens separadas. A maioria das presas pertence à ordem Homoptera (pragas
sugadoras, incluindo cochonilhas).

•

Os adultos não são predadores mas se alimentam do pólen e de substâncias com açúcar. No entanto,
também foram
identificados atacando várias espécies de afídeos, ácaros, tripes, pulgões, ovos de lagartas, mineiros defolha, psílios, pequenas mariposas e lagartas, larvas de besouros. Também são considerados importantes
predadores de cochonilhas nos viveiros.

•

Predadores de cochonilhas são Hemerobius sp., Sympherobius maculipennis, Sympherobius sp.
(Neuroptera: Sympherobiidae), Scymnus nitidus, Hyperaspis funesta (Coleoptera: Coccinellidae). 42•

Parasitoides: da família Encyrtidae (por exemplo. Anagyrus spp., Acerophagus spp. and Leptomastixspp.), Platygasteridae (ex. Allotropa spp.)43•

Allotropa musae é um parasitóide que não está comercialmente disponível. Descrito pela primeira vez
em 2004, ele paralisa os primeiros estágios de crescimento da praga e é mais frequentemente
encontrado nos pecíolos e nas folhas.44.

37 Fonte: https://upload.wikimedia.org/wikipedia/commons/thumb/e/ee/Chrysoperla_carnea_larva02.jpg/220px-Chrysoperla_carnea_larva02.jpg.
38 Fonte: Hernández 2011.
41 New, Adams & Penny, Hunter, Arredondo, apud Valencia et al., 2006.
42 New, Adams & Penny, Hunter, Arredondo, apud Valencia et al., 2006.
43 Hernández, 2011; Waterhouse, apud Cubillo 201344 Hernández, 2011; Waterhouse, apud Cubillo, 2013116

Escalas/ Diaspis boisduvalli Signoret/Aspidiotus destructor Signoret/Chrysomphalus aonidium Linn.
•

Parasitóides: Hymenoptera da família Aphelinadae tais como Aphytis sp., Coccobius sp., e a
família Encyrtidae, por exemplo Plagiomerus sp.48•

Aphytis sp.: São ectoparasitóides que colocam ovos sob os escudos das escalas e dascochonilhas, depositando-os no corpo da vítima após paralisá-los. Além disso, uma grande partedas Diaspis morre diretamente quando o parasita as perfura com seu ovipositor, visando sealimentar dos fluidos provenientes do ferimento que acabaram de causar. Essa ação predatória(mordidas nutricionais) constitui um passo muito importante para o controle da Diaspis no campo.

•

Predadores: Joaninhas predadoras Cryptolaemus montrouzieri, Pentilia spp. E Delphastus spp.
(Coleoptera: Coccinelidae) e formigas-leão Chrysoperla sp. E Ceraeochrysa spp.49•

Entomopatógenos: Beauveria bassiana: Capaz de infectar mais de 200 espécies de insetos. Temaparência empoeirada, com textura de algodão ou de cor amarelada.

•

Os esporos do fungo aterrissam nas cutículas dos insetos, germinam e penetram nessa cutícula por
onde o fungo penetra nos tecidos macios do inseto. Uma vez dentro do inseto, o fungo lanças assuas estruturas e coloniza as cavidades do hospedeiro. Então, começa a produzir uma toxina
chamada Beauvericin que ajuda a quebrar o sistema imunológico do hospedeiro, que facilita ainvasão de todos os tecidos pelo fungo. Após a morte do inseto, o fungo multiplica suas unidades
infecciosas (Hifa), que cresce simultaneamente, e por fim, invade todos os tecidos dos insetos e se
tornam resistentes à decomposição, aparentemente devido aos antibióticos secretados pelo
fungo.50

Aphytis sp. adulta45

Pentilia pp. adulta46

Inseto paralisado pela Beauveria
bassiana47

45 Fonte: http://gipcitricos.ivia.es/wp-content/uploads/2010/07/A.-melinus-1-206x155.jpg.
46 Fonte: Pesquisa de imagens no Google.
47 Fonte: Pesquisa de imagens no Google.
48 Cubillo 2013; Solano 201949 Guillén et al., Guillén e Laprade, apud Solano 2019; Cubillo 2013
50 INTAGRI 2020

117

Moleque da bananeira / Cosmopolites sordidus Germar.

Tetramorium guineense adulta52

Moleque da bananeira (C. sordidus)
parasitado por Beauveria bassiana53

Plaesius javanus adulta51•

As larvas do inseto tem os seguintes predadores: Plaesius javanus, Hololepta quadridentada (Coleoptera: Histeridae) e
Dactylosternum hydrophiloides (Coleoptera: Hydrophilidae), formigas: Pheidole megacephala, P. guineense, Azteca sp. E Tetramorium
guineense (Hymenoptera: Formicidae).54•

Plaesius javanus: é considerado nativo do sudeste asiático, especificamente das ilhas que formam a Indonésia tais como Java e
Sumatra. P. javanus foi introduzido por diversos países na Ásia, África e nas Américas. Foi liberado em 29 países ou ilhas, e seestabeleceu em 12 (41,4%). Ilhas Cook, Fiji, Guam, Jamaica, Marianas, México, Nova Caledônia, Porto Rico, Samoa Taiti, Tonga eTrinidad. P. javanus pode consumir até oito larvas totalmente desenvolvidas de C. sordidus por dia. 55•

Com base em testes de laboratório, as larvas e adultos de P. javanus atacaram de 75 a 88% das larvas e 38 a 53% de pupas de C.
sordidus colocadas ems túneis feitos artificialmente nas partes das plantas56. No entanto, as tentativas de introduzir esses inimigos
naturais em outras regiões de banana foram sem sucesso. A pesquisa de predadores endêmicos (besouros e tesourinhas) na África
sugere apenas um potencial limitado para controle sob condições de campo57.

51 Fonte: Pesquisa de imagens no Google.
52 Fonte: Pesquisa de imagens no Google.

Fonte: Ramírez e Torres, 2016.
54 Sirjusingh et al. E Sponagel et al., apud Cubillo 2013; Gold e Messiaen 2000.
55 Jepson, apud Arredondo e Rodríguez, 2015
56 Arredondo e Rodríguez, 2015

Gold e Messiaen, 2000

118

•

Tetramorium guineense: formigas são capazes de localizar e predar algumas larvas de C. sordidus 58.

•

Os nematóides entomopatogênicos (NEP), Steinernema spp. e Heterorhabditis spp., atacam besouros tanto adultos como suas larvas
no campo (Gold e Messiaen, 2000). A diversidade das linhagens isoladas apresenta uma ampla gama de hospedeiros. A habilidade
dos NEPs de eliminarem os insetos entre 24 e 48 horas, bem como o desenvolvimento das formulações comerciais, os tornam uma
alternativa para controlar C. sordidus nas plantações de Banana 59. No entanto, uma vez que os NEPs podem ser afetados por
condições ambientais como temperatura, radiação solar (raios UV) e características de solo como acidez, matéria orgânica e textura(60), estratégias são necessárias para melhorar sua sobrevivência no campo, como o uso de diferentes métodos de encapsulamento
61 ou isolamento das linhagens adaptadas às condições do ecossistema agrícola.

•

Fungos entomopatogênicos: Cordyceps bassiana, Beauveria bassiana Bals e Metarhizium anisopliae Metch são agentes de controle
biológico desse inseto62. B. Bassiana é um fungo entomopatogênico atualmente utilizado em geral nas aplicações no cultivo,
colocado em armadilhas; esse método apresenta os melhores resultados de infecção e controle .63•

Outros predadores de larvas e ovos são Euborellia annulipes Lucas (Dermaptera: Carcinophoridae) e Labia borelli Burr (Dermaptera:Labiidae) 64, Ontophagus sp. (Coleoptera: Scarabaeidae)65, Eutochia sp., (Coleoptera: Tenebrionidae),66.

58 Castañeda, 2016
59 Kaya; Hiltpold, apud Vidaurre et al., 2020
60 Bedding; Andaló et al., apud Viaduarre et al., 2020
61 Peters; Bogantes, Flores, Castellón, e Uribe, apud Vidaurre et al., 2020
62 Contreras, Carballo apud Cubillo 2013; Maharaj & Khan; González et al., apud Vidaurre et al., 2020
63 Navas, 2011
64 Koppenhöfer, Tinzaara et al., apud Navas, 2011
65 Cubillo et al., Ríos et al., apud Navas, 2011
66 Castrillo, apud Navas, 2011119

Nematóides/ Radopholus similis (Cobb) Thorne/Pratylenchus coffeae Sher & Allen/Helicotylenchus multicinctus Cobb /H.
dihysteria Cobb/ Meloidogyne incognita (Kofoid e White) Chitwood/ Meloidogyne javanica (Treub) Chitwood,a) Adesão do conídio ao nematóide.
b) Germinação do Conídio, c) Penetração,d) Colonização do corpo do nematóide pelo fungo.
e) Crescimento externo e produção de Conídio67

Ação antibiótica do fungo endofítico sobre o nematóide.68•

Meloidogyne javanica (Treub) Chitwood, fungo que parasita os ovos, cistos e nematóides adultos. Ele também pode afetar amobilidade dos nematóides encontrados fora das raízes. Dessa forma, pode afetar os nematóides em quaisquer destes estágios,causando sua morte ou prevenindo que o nematóide complete seu ciclo de vida, portanto, reduzindo as populações no campo.

•

Espécies Bacillus como a B. firmus e B. subtilus, e linhagens das bactérias Pseudomonas fluorescens demonstraram inibir a invasão das
raízes pelo R. similis 69.

•

Testes do uso e inoculação do fungo endofítico (Trichoderma spp. E Fusarium spp.) em plantas in vitro em nível de viveiro
demonstraram resultados promissores. Meneses (2003) e Morales (2014) demonstraram que os fungos endofíticos Trichoderma spp. E
Fusarium spp. Reduziram as populações de R. similis de 75 a 100%, e obtiveram melhores resultados ao combinar ambos.

67 Fonte: Monzón et al., 2009.
68 Fonte: Meneses 2003.
69 Aalten et al.; Mendoza e Sikora, apud Coyne and Kidane, 2019120

Ervas daninhas/ diversos gêneros e espécies.
Não existem referências de uso prático conhecidas para o controle biológico das ervas daninhas
específicas para banana e banana-da-terra, esses cultivos possivelmente se beneficiarão uma vez que as
pesquisas atuais identificarem predadores ou patógenos para o controle de Chromolaena odorata,
Mikania micrantha H.B.K e de outras ervas daninhas71.
O controle biológico das ervas daninhas utiliza inimigos naturais que se alimentam da planta, incluindo masnão se limitando a insetos, ácaros e nematóides, ou eles também podem ser controlados por doenças
causadas por fungos72.
Exemplos de controle biológico em
outros cultivos. Sintomas da doença
causados por Fusarium oxysporum FOXY
2 nas gemas de Striga hermonthica(direita) e controle (esquerda).70

Meloidogyne javanica (Treub) Chitwood, fungo que parasita os ovos, cistos e nematóides adultos. Eletambém pode afetar a mobilidade dos nematóides encontrados fora das raízes. Dessa forma, pode afetar
os nematóides em quaisquer destes estágios, causando sua morte ou prevenindo que o nematóide
complete seu ciclo de vida, portanto, reduzindo as populações no campo.
Espécies Bacillus como a B. firmus e B. subtilus, e linhagens das bactérias Pseudomonas fluorescens
demonstraram inibir a invasão das raízes pelo R. similis 74.

Ação antibiótica do fungo endofítico
sobre o nematóide.73

Testes do uso e inoculação do fungo endofítico (Trichoderma spp. e Fusarium spp.) em plantas in vitro em
nível de viveiro demonstraram resultados promissores. Meneses (2003) e Morales (2014) demonstraram que
os fungos endofíticos Trichoderma spp. E Fusarium spp. Reduziram as populações de R. similis de 75 a 100%,e obtiveram melhores resultados ao combinar ambos.

70 Fonte: Elzein e Kroschel, 2004
71 Terry, 1996
72 FAO, 2004
73 Fonte: Meneses 2003.
74 Aalten et al.; Mendoza e Sikora, apud Coyne and Kidane, 2019121

Sigatoka Negra Mycosphaerella fijiensis Morelet.
•

Bacillus subtilis75••

Bacillus subtilis QST-713 (sin. B. amyloliquefaciens): Biofungicida de ação protetiva de contato.
Lipopeptídeos, substâncias resultantes da fermentação de bactérias destroem as membranas
celulares das estruturas fúngicas (rompimento dos tubos germinativos e micélio dos fungos).
Também cria uma zona de inibição na folha, prevenindo que o patógeno ataque e impedindo
que o crescimento do patógeno compita por nutrientes e espaço na superfície da folha. Ele
ataca organismos-alvo exclusivamente, tornando-o seguro para peixes, polinizadores e outrosorganismos benéficos. Devido a sua origem natural, esse produto não causa danos a seres
humanos e não tem restrição em relação ao número de aplicações, e também ajuda a reduzir acarga química do cultivo76.
Bacillus pumilus QST-2808: Biofungicida de ação protetiva de contato. Ele impede que os fungos
produzam amino açucares que interrompam o metabolismo da célula e destruam as paredes
celulares do hospedeiro. Também cria uma área de inibição na superfície da planta, impedindo
que o fungo se estabeleça, interrompendo a competição por nutrientes e espaço na superfícieda folha. Ele ataca organismos-alvo exclusivamente, tornando-o seguro para peixes,
polinizadores e outros organismos benéficos. Devido a sua origem natural, esse produto não
causa danos a seres humanos e não tem restrição em relação ao número de aplicações, etambém ajuda a reduzir a carga química do cultivo78.
Outros agentes de controle bioógico sob investigação são: Bactérias: Paenibacillus spp., Serratia
spp. e Streptomyces spp.; fungos: Trichoderma spp. e Rhizophagus irregularis. 79.

Bacillus pumilus77

75 Fonte: Pesquisa de imagens no Google.
76 Bayer, 2018; Guzmán, 2012; Guzmán et al., 2019
77 Fonte: Pesquisa de imagens no Google.
78 Bayer, 2018; Guzmán, 2012; Guzmán et al., 201979 Guzmán, 2012; Guzmán, et al. 2019122

Sigatoka Negra Mycosphaerella fijiensis Morelet.

Pseudomonas spp.80

Trichoderma spp.81

Atualmente não existem agentes de controle biológico comercialmente disponíveis contra a bactéria do Moko. Os agentes de controle
biológico sob investigação são:Pequenas populações de Ralstonia solanacearum raça 2 (Smith), que foram observadas em partes de banana (Musa AAB Simmonds)82 e
bactérias antagonistas83.

80 Fonte: Pesquisa de imagens no Google.
81 Fonte: Pesquisa de imagens no Google.
82 Alexopoulus e Mims, apud Ceballos et al., 2014

Guzmán et al., 2019.

123

TR4 Podridão Basal (Fusarium oxysporum f. Sp. cubense) – Foc .

Trichoderma spp.86
Crescimento do fungo Fusarium spp em PDA médio (A e C). Clamidósporo do Fusarium
spp (B). Esporos do Fusarium spp (D)84
85

•
•
•
•

•

Não existem agentes de controle biológico para uso comercial direcionados para o controle do T4R (Foc).
A natureza perene da planta de banana e a necessidade de eficácia em longo prazo de tais controles são raramente consideradas
ao desenvolver estratégias de manejo para essa doença. Grande parte da literatura desse tópico revela os resultados dos estudos decurto prazo in vitro ou em viveiro sem indicação de comprovação de que são úteis em campo.
Por exemplo, embora muitos estudos de controle biológico tenham sido conduzidos, nenhum dos resultados publicados indica que
será benéfico devido ao custo da efetividade em campo87.
Os agentes de controle biológico sob investigação: Existem evidências experimentais de que Trichoderma spp., Fusarium oxysporumnão patogênicos e algumas espécies de bactéria tem potencial para o controle biológico da T4R. Contudo, essa evidência foi
obtida em estudos realizados in vitro e em viveiros88. A literatura científica indica que alguns solos são portadores de Fusarium spp.
isolados não patogênicos ou pertencentes a outras formas especiais, e agem como supressores a linhagens de patógenos 89.
Compostos voláteis de fungos endofíticos isolados da Musa spp. demonstraram uma altoefeito inibitório significativo do Foc(90).

84 Fonte: Pesquisa de imagens no Google.
85 Fonte: Pesquisa de imagens no Google.
86 Fonte: Pesquisa de imagens no Google.
87 Ploetz, 2019
88 Dita et al., 201789 Amir & Alabouvette, apud López e Castaño, 201990 Ting et al., apud

López and Castaño, 2019

124

•
•

•
•

Com relação a outros microorganismos, foi documentado que a B. subtilis inibe o crescimento de micélios, coloniza os tecidos das
plantas, reduz a descoloração vascular e a incidência da doença 91.
Estudos indicaram que:o Serratia marcescens pode atuar como um indutor da produção de enzimas envolvidas na defesa das plantas da banana,suprimindo a incidência da doença 92.
o Streptomyces griseus afeta o desenvolvimento do Foc, ao inibir a formação de esporos e a degradação das paredes celularesdos fungos.93
o Streptomyces violaceusniger G10 inibe o crescimento do micélio e previne os conídeos.
Compostos voláteis de fungos endofíticos isolados da Musa spp. demonstraram uma altoefeito inibitório significativo do Foc 94.
Com relação a outros microorganismos, foi documentado que a B. subtilis inibe o crescimento de micélios, coloniza os tecidos das
plantas, reduz a descoloração vascular e a incidência da doença 95.

91 Sun et al., apud López e Castaño, 201992 Ting et al., apud

López and Castaño, 2019

93 Zacky & Ting, apud López and Chestnut, 201994 Ting et al., apud

López and Castaño, 201995 Sun et al., apud López e Castaño, 2019125

Referências
Arredondo, H; Rodríguez, L., 2015. Casos de control biológico en México. Vol. 2 biblioteca
básica de agricultura. 38 p. ISBN 978-607-715-258-3.
Bayer CropScience. 2018. Racimo de soluciones. Guía técnica para banano. Equador. 40 p.
Castañeda, R. 2016. Control biológico de plagas y enfermedades. Universidad popular dela Chontalpa. México. 216 p. Consultado 24 oct. 2020. Disponible enhttps://images.app.goo.gl/vGDi6RFSFN4jirEb8.
Ceballos, G; Álvarez, E; Bolaños, M. 2014. Reduction in populations of Ralstonia
solanacearum race 2 in plantain (Musa AAB, Simmonds) with extracts from Trichoderma spp.
Alexopoulus y Mims) and antagonistic bacteria. Acta agronómica 63, p. 83-90.
Cock, M. 1996. Control biológico de malezas. Manejo de malezas para países en desarrollo.
FAO. Roma, Italia. 394 p. ISBN 92-5-303427-0.
Control Bío. 2020. ¿Quiénes son los enemigos naturales de la cochinilla? Consultado 26 oct.
2020. Available in http://controlbiologico.info/index.php/es/control-biologico-de-plagas-yenfermedades/plagas-agricolas/cochinillas
Coyne, D; Kidane, S. 2019. Nematode pathogens. Handbook of Diseases of Banana, Abacáand Enset. Edited by David R. Jones. UK. CABI. P. 429-461.
Cubillo, D. 2013. Manejo integrado de plagas: conceptos y aplicaciones. Chemplast
International Corp., San José, Costa Rica. 105 p.
Dita, M; Echegoyen, P; Pérez, L. 2017. Plan de contingencia ante un brote de la raza 4 tropicalde Fusarium oxysporum f.sp. cubense en un país de la región de OIRSA. OIRSA. San Salvador,
El Salvador. 211 p.
EcuRed. 2020. Cycloneda sanguinea L. Consultado 27 oct. 2020. Disponible enhttps://www.ecured.cu/Cycloneda_sanguinea_L.
Eden-Green, S. 2019. Moko bacterial wilt and bugtok. Handbook of diseases of banana,abacá and enset. Edited by David R. Jones. UK. CABI. p. 314-323.
Elzein, A; Kroschel, J. 2004. Progresos en el manejo de malezas parásitas. Manejo de malezaspara países en desarrollo. Estudio FAO, Producción y Protección vegetal. Roma, Italia. 319 p.
ISSN 1014-1227. ISBN 92-5-303427-0120.
FAO. 2004. Manejo de malezas para países en desarrollo. Estudio FAO, Producción yProtección vegetal. Roma, Italia. 319 p. ISSN 1014-1227. ISBN 92-5-303427-0120.
González, M; Cubillo, D. 2014. Guía de manejo de plagas. Lista verde y amarilla. Escama de
Boisduval en banano. CABI/Chemplast/CATIE. Costa Rica. 1 p.
Guzmán, M. 2012. Control biológico y cultural de la sigatoka negra. Tropical Plant Pathology
37 (suplemento), agosto 2012. 45º Congreso Brasileiro de Fitopatología. Manaus, AM. 5 p.
Guzmán, M; Pérez, L; Carlier, J; Abadie, C; De Lapeyre, L; Carreel, F; Marín, D; Romero, R;
Gauhl, F; Pasberg, C; Jones, D. 2019. Black Leaf Streak. Handbook of diseases of banana,abacá and enset. Edited by David R. Jones. UK. CABI. p. 41-115.
Hernández, E; Camero, A; Velázquez, Y; Ramos, C. 2011. La cochinilla de la platanera.
Agrocabildo. Islas Canarias. 6 p.
INTAGRI. 2020. Beauveria bassiana en el control biológico de patógenos. Consultado el 25
oct. 2020. Available in https://www.intagri.com/articulos/fitosanidad/beauveria-bassiana-enel-control-biologico-de-patogenos.

126

IVIA. 2020. Aphytis melinus. Gestión integrada de plagas y enfermedades en cítricos. Instituto
Valenciano de Investigaciones Agrícolas. Consultado 23 oct. 2020. Disponible en
http://gipcitricos.ivia.es/ahytis-melinus-debach.html.
Labrada, R. 2006. Recomendaciones para el manejo de malezas. FAO. Roma, Italia. 61 p.
Loor, J. 2016. Control cultural, físico y químico de la escama blanca (Diaspis boisduvalii) en
cultivos de banano del cantón Marcelino Maridueña. Tesis Ingeniero Agrónomo. Equador.
Universidad de Guayaquil. 56 p.
López, S; Castaño, J. 2019. Manejo integrado del mal de panamá [Fusarium oxysporum
Schlechtend.: Fr. sp. cubense (E.F. SM.) W.C. Snyder & H.N. Hansen]: una revisión. Revista
U.D.C.A. Actualidad y divulgación científica volumen 22 No. 2:e1240 ISSN:2619-2551 en línea.
ISSN:0123-4216 impreso. Colombia. 13 p.
Meléndez, G. 2019. Manejo y prevención de cochinilla (Pseudococcus sp.) en el racimo debanano en la hacienda María José 1, zona de Babahoyo. Tesis Ingeniero Agrónomo.
Equador. Universidad Técnica de Babahoyo. 38 p.
Meneses, A. 2003. Utilización de hongos endofíticos provenientes de banano orgánico parael control de biológico del nemátodo barrenador Radopholus similis Cobb, Thorne. Tesis deMaestría. CATIE. Costa Rica. 89 p.
Milán, O. 2010. Los coccinélidos benéficos en Cuba. Historia y actividad entomófaga.
Instituto de Investigaciones de Sanidad Vegetal. Fitosanidad V. 14, No. 2, Junio 2010, p. 127135.
Monzón, A; Herrera, I. Méndez, E. 2009. Guía: Uso y Manejo de Paelomyces lilacinus para elcontrol de nemátodos fitoparásitos. Universidad Nacional Agraria. Nicaragua. 15 p.
Morales, D. 2014. Bioprospección de hongos endofíticos para el control biológico delnemátodo barrenador Radopholus similis (Cobb) Thorne en el cultivo de banano. Tesis deMaestría. Instituto Tecnológico de Costa Rica. Costa Rica. 54 p.
Moreira, C. 2017. Evaluación de tres insecticidas orgánicos en el control de cochinilla(Dysmicoccus texensis) en el cultivo de banano (Musa spp.) variedad Williams en la época
lluviosa en la zona la Maná. Tesis Ingeniero Agrónomo. Equador. Universidad Técnica Estatalde Quevedo. 74 p.
Ploetz, R. 2019. Fusarium wilt. Handbook of diseases of banana, abacá and enset. Edited byDavid R. Jones. UK. CABI. p. 207-228.
Ramírez, J; Torres, H. 2016. Control del picudo (Cosmopolites sordidus) en el cultivo deplátano (Musa paradisiaca) usando tres agentes biológicos, Heterorhabditis bacteriophora,
Beauveria bassiana y Metarhizium anisopliae. Tesis Ingeniero Agrónomo. Zamorano.
Honduras. 19 p.
Solano, M. 2019. Parasitoides de la escama de boisduval (Diaspis boisduvalii) y porcentaje
de parasitismo, en plantaciones de banano (Musa AAA, subgrupo Cavendish) de lavertiente de Costa Rica. Tesis Ingeniero Agrónomo. Costa Rica. Universidad de Costa Rica.
88 p.
Terry, P. 1996. Manejo de las malas hierbas en bananos y plátanos. Manejo de malezas parapaíses en desarrollo. Estudio FAO, Producción y Protección vegetal. Roma, Italia. 394 p. ISBN
92-5-303427-0.
Valencia, L; Romero, J; Valdez, J; Carrillo, J; López, V. 2006. Taxonomía y registros deChrysopidae (Insecta: Neuróptera) en el estado de Morelos, México. Acta zoológica
mexicana (n.s.) 22(1):17-61 (2006). 45 p.

127

Valverde, 2004. Progreso en el manejo de Rottboellia cochinchinensis. Manejo de malezaspara países en desarrollo. Estudio FAO, Producción y Protección vegetal. Roma, Italia. 319 p.
ISSN 1014-1227. ISBN 92-5-303427-0120.
Vidaurre, D; Rodríguez, A. Uribe, L. 2020. Factores edáficos y nemátodos entomopatógenos
en un agroecosistema neotropical de banano. Revista de Biología Tropical, 68(1), 276-288.
Wikipedia. 2020. Chrysoperla carnea. Consultado 25 oct. 2020. Available inhttps://es.wikipedia.org/wiki/Chrysoperla_carnea

RECURSOS DE MIP
Aplicativos de MIP
Aplicativo “Pesticidas e Alternativas” https://www.rainforest-alliance.org/articles/app-forintegrated-pest-managementVocê pode baixar gratuitamente do GooglePlay ou Loja de Aplicativos iTunes em inglês,português e espanhol. Uma vez que você baixar, você pode usar sem internet para que
possa acessá-lo de onde quer que você esteja. Esse aplicativo lhe fornecerá informações
sobre os pesticidas e suas alternativas para cada país.
Outros recursos para manipulação, armazenagem, transporte e uso de pesticidas.
FAO. 2008. Orientações para Opções de Gestão de Embalagens Vazias de Pesticidas.
http://www.fao.org/fileadmin/templates/agphome/documents/Pests_Pesticides/Code/Containers08.pdf
Orientações da CropLife para gestão de embalagens: https://croplife.org/cropprotection/stewardship/container-management/

MODELO DO TIPO DE INFORMAÇÕES MÍNIMAS A SEREMREGISTRADAS PARA A ESTRATÉGIA DE MIP
Os dados de monitoramento e registro são componentes muito importantes na estratégiade MIP para saber se há sucesso ou se são necessárias atualizações e alterações na
estratégia.
Isso também lhe ajudará a fazer a atualização anual da estratégia. Ao menos: registrar emanter as seguintes informações sobre cada praga:
1.
2.
3.
4.
5.
-

Nome da praga (nome comum, nome científico).
Momento e local de ocorrência:
Principais inimigos naturais:
Tolerâncias e método de amostragem:
Manejo:Medidas preventivas
Medidas de controleo Não-químico
o Químico

128

EXEMPLOS DE INIMIGOS NATURAIS
Ilustração exemplo

Organismo
benéfico

Praga controlada (presa
ou hospedeiro)

Predadores

Joaninhas(Coccinellidae)
Larva e adulta(Váriasespécies).

Afídeos são as presas
preferidas, mas também
se alimentam decochonilhas, ácaros eoutras pragas de corpos
macios e seus ovos.

Joaninha(Delphastus
catalinae)

Alimenta-se da mosca
branca em
todos os estágios.

Adulto (acima)
e larvas(abaixo) e seus
adultos.
Destruidor decochonilhas(Cryptolaemus
montouzieri).

Alimenta-se decochonilhas e afídeos.

A larva se
assemelha com
as cochonilhas
e pode serfacilmente
confundida.

129

A lagarta da
BorboletaMacaco(Spalgis epeus),que seassemelha com
sua presa, acochonilha.

Cochonilhas

130

Larvas e adultasdaBesouropredador(Rhyzobius
lophantae)

Se alimenta de escalasescamadas.

Larvas e adultas
Besouro Vedalia(Rodolia
cardinalis)

Alimenta-se da escalaalgodoeira, cochonilha
do algodão.

Larva daformiga-leão
(Chrysoperlassp)

Afídeos, ácaros e outros
insetos.

Ninfas e seus
adultos.
Ácarospredadores(Família:
Phytoseiidae)

Alimenta-se de ácaros,
moscas brancas, larvasde tripes, larvas
voadoras, ninfas depsilídeos.

131

Larvas das
moscas-dasgalhas.
(Feltiella ssp)
O adulto podeser facilmente
confundido
com umpequenomosquito.

Mirídeo adulto(Macrolophus
ssp)

Alimenta-se ácaros,afídeos.

Adulto: a presa preferida
é a mosca branca, mastambém são predadoresde afídeos, ovos demariposas e pequenas
lagartas (incluindo larvas
e mineiros de folha),
ninfas de psilídeos.
As ninfas se alimentamde ácaros.

Orius adultos.

Alimenta-se de ninfas detripes e quando adulto,
afídeos.

132

Ninfas e adultos
de louva-deus.

Adulto (acima)
e larvas(abaixo) ou
Sirfídeos (vários
gêneros).

Alimenta-se degafanhotos, grilos,
abelhas, vespas e
moscas.

Alimenta-se de afídeos.
(Adultos se alimentam
do pólen e néctar).

133

Parasitoides

Vespa parasita(Vários gêneros)

Parasita as larvas damosca branca, afídeos,
ninfas de cochonilhas,ovos e larvas deborboletas e mariposas,
ovos de insetos e ninfas
de psilídeos.

Vespa
Tricograma
adulta(Diversas
Trichogrammasp.)

Mais de 200 espécies depragas, incluindo
minhocas, bichos defruta e os ovos de muitas
mariposas e borboletas.

Pequena vespa de Trichogramma em ovos deminhoca no fruto.

Vespasbraconídeas
adultas.
(Váriasespécies).

Parasita uma grandequantidade de pragas(lepidóptera, coleóptera
etc).

Vespa adulta
Diglyphus isaea

Larvas de minadores defolhas.

134

Patógenos:

Nematóide
entomopatogênico
(Steinerma ssp )Mata pupa de tripes,
larvas voadoras,
lagartas de solo eum grande número
de outros insetos.

Nematóide
entomopatogênico
(Heterorhabditis
bacteriophora)

Infecta as lagartasde solo dos
besouros, brocas emoleques dabananeira.

Galleria mellonella (traça da cera) saudável(esquerda), infectada com Steinerma carpocapsae(centro), e infectada com teinernema glaseri (direita).

Verme saudável (esquerda) e verme infectado com
Heterorhabditis bacteriophora (direita).

Fungosentomopatogênicos
Metarhizium
anisopliae

Fungosentomopatogênicos
Lecanicillium
muscarium

Moscas brancas mortas por L. muscarium.

Infecta e matabesouros, vermes,
locustas, ácaros,
gafanhotos, afídeos,
tripes, moscas
brancas, gorgulhos ecarrapatos.
Os fungos
entomopatogênicos
devem ser usados
em uma faixa detemperatura de 12 a
32ºC e direcionadosà praga.
Infecta as larvas damosca branca,
algumas vezes
também a pupa eos adultos.
Os fungos
entomopatogênicos
devem ser usados
em uma faixa detemperatura de 12 a
32ºC e direcionadosà praga.

135

Fungos
entomopatogênicos:
Beauveria bassiana
e Isaria fumosorosea

Infectam larvas damosca branca,
tripes.
Os fungos
entomopatogênicos
devem ser usados
em uma faixa detemperatura de 12 a
32ºC e direcionadosà praga.

Bactéria
entomopatogênica
Bacillus thuringensis.

Larvas de várias
mariposas eborboletas.

Lagarta morta pelo
Bacillus thuringiensis

Bactéria
entomopatogênica
Bacillus subtilis e B.
licheniformis

Raiz infectada por nematóides.

Infecta e mata os
nematóides (várias
espécies).

Raiz tratada com B.
subtilis

Predadores - aqui estão mais alguns. Também pássaros, corujas e morcegos são predadores
importantes. Aranhas são alguns dos melhores predadores devido aos seu número eespécies).

136

Outros inimigos naturais
Reduvídeos

Donzelinhas

Pássaros

CorujasMorcegos

Aranhas137