Trace Nutrients Resezrch 23:89-92

Trace Nutrients Research 23 : 89 − 92（2006）(2006)

牡蠣（Crassostrea gigas）肉エキス製造過程廃棄物からの有用成分の回収とその有効性の評価
安部麻美子 1），松田芳和 1）
，小邨奈未 1）
，吉田宗弘 2）

（1）日本クリニック㈱・中央研究所＊，2）関西大・工学部＊＊）

Recovery of a Useful Component from Waste during Production of Oyster Extract(Crassostrea gigas) and Assessment of Its Availability
Mamiko ABE1）, Yoshikazu MATSUDA1）, Nami KOMURA1）, Munehiro YOSHIDA2）
1）

Central Research Institute, Japan Clinic Co., Ltd.

2）

Department of Biotechnology, Faculty of Engineering, Kansai University

SummaryA taurine-rich fraction (P-III fraction) was prepared from waste during the production of oyster extract and its
bioavailability was evaluated. Five-week-old male Wistar rats were divided into 3 groups; HC, T and P-III. The HC
group was fed AIN93G diet supplemented with cholesterol (1 %) and sodium cholate (0.25 %). The T and P-III
groups were fed the high-cholesterol diet supplemented with taurine (0.5 %) or P-III dry powder, respectively.
Dietary taurine levels in the P-III group were equal to those in the T group. After feeding for 16 days, taurine concentrations in the liver, muscles, eyes and blood of rats in the T and P-III groups were significantly higher thanthose in HC group. Total cholesterol levels in the liver and serum of the T and P-III groups were significantly lower
than those in the HC group. These findings indicate that oyster taurine was recovered in P-III as an available form.
In addition, we could obtain crystalline taurine from the P-III fraction.

近年，食品廃棄物から有用な成分を回収し，再利用することが研究されている。牡蠣（Crassostrea gigas）は，栄養豊富な食品として知られており，健康食品としても一般に広く利用されている。現在，牡蠣肉エキス製造過程において，牡蠣の熱水抽出液からグリコーゲンなど高分子の有効成分を分離した後の画分を廃棄している。この画分には低分子の水溶性化合物が残存しており，タウリンなどの多くの有用成分が存在すると考えられる。タウリンは低分子性の含硫化合物の一種であり，コレステロール低下作用や肝機能の改善作用を有するといわれている

1−3）。一般に，天然物からのタウリンの抽出は，イオン交換法，電気透析法，有機溶剤を使用する析出法などによって行われている。これらの方法は，大規模な装置や高価な薬品を必要とするため，コスト高になるという欠点がある。本研究では，牡蠣肉エキス製造
過程廃棄物に残存するタウリンに着目し，その簡便な回収法を開発するとともに，有効性の検討を行った。

実験方法
1．高タウリン画分の調製
4）

Fig. 1 に高タウリン画分の調製法を示した 。牡蠣の熱水抽出液（S-I）にエタノールを添加してグリコーゲンなどの高分子成分を沈殿として除去した後，上清（S-II）を回収し濃縮した。この濃縮液を冷却し，析出した沈殿（P-III）を高タ＊＊所在地：京都市右京区太秦開日町 10−1（〒 616−8555）＊＊所在地：吹田市山手町 3−3−35（〒 564−8680）― 89 ―

Trace Nutrients Resezrch 23:89-92(2006)

Fig. 1 Fractionation of oyster.

ウリン画分として，動物実験に用いた。
2．実験動物と飼育条件
体重約 130 gの 5週齢の Wistar 系雄ラット 24 匹を 8 匹ずつ 3 群に分け，それぞれ HC 群，T群，P-III群とした。HC群には AIN93G飼料に 1.0％コレステロールと0.25 ％コール酸ナトリウムを添加した高コレステロール基本飼料，T群には基本飼料に 0.5 ％タウリンを添加した飼料，P-III群には基本飼料に T群飼料とタウリン濃度が等しくなる量の P-IIIを添加した飼料を投与し，16日間飼育した。なお，摂餌量を同量にするために，飼料は一日あたりの量を制限して投与した。飼育期間終了後，全血，肝臓，心臓，脳，筋肉，眼球を採取し，測定に供した。
3．コレステロールの定量
血清総コレステロール濃度はコレステロールオキシダーゼ・DAOS 法によるコレステロールE-テストワコー（和光純5）

薬工業社製）で測定した 。肝臓の一部に蒸留水を加えてホモジナイズし，ホモジネートからジエチルエーテルを用いて抽出したものを肝臓抽出液とした。肝臓抽出液の一定量を乾固後，tert-ブチルアルコールと Triton X-100：メタノール（＝ 1： 1）混液を加えて溶解し，血清と同様にコレステロール E-テストワコー（和光純薬社製）でコレステロール濃度を測定した6, 7）。血清 HDL-コレステロール濃度はリンタングステン酸・マグネシウム塩沈殿法による HDL-コレス8）
テロール E-テストワコー（和光純薬工業社製）で測定した 。

4．タウリンの定量
肝臓，心臓，脳，筋肉，眼球のそれぞれに蒸留水を加え，ホモジナイズした。その一定量をスルホサリチル酸による除タンパク後，高速液体クロマトグラフィーでタウリン濃度を測定した。全血，血清は試料をスルホサリチル酸による除タンパク後，同様に測定した。

結果と考察
糖度計による糖濃度 35％（Brix35）のときの S-IIの分析結果を Table 1，2に示した。牡蠣の抽出濃縮液（S-II）は，粗タンパク（ケルダール窒素）が 17.5 g/100 g であった。またアミノ酸組成を見ると，タウリン含量が3.98 g/100 gで最も多く，ついでグルタミン酸，プロリンなどが多く含まれていた。この S-II を濃縮，冷却することによって得られる沈殿
P-III は褐色をしており，乾燥粉末のタウリン濃度は約 70 ％であったことから，P-IIIはタウリンを豊富に含む画分と言える。
すべての群のラットとも，飼育中の様子や解剖所見において異常を認めなかった。Table 3に各群ラットの体重，組― 90 ―

Trace Nutrients Resezrch 23:89-92(2006)

織重量をまとめた。すべての群において，差は認められTable 1 Composition of S-II fractionなかった。Table 4に各群ラットの組織中タウリン濃度をComponents

Contents (g/100 g)

まとめた。肝臓，筋肉，眼球，全血では，T群，P-III群

Moisture
Crude protein
Crude fat
Ash
Carbohydrate

66.1
17.50.2
9.4
6.8

において HC群よりも高いタウリン濃度を認めた。肝臓，全血においては T 群より P-III群のほうが高い傾向が見られた。これらのことから飼料に添加したタウリンはラット体内に取り込まれたと思われる。Table 5に各群ラットの肝臓，血清総コレステロール濃度，血清 HDL-コレステ

Table 2 Composition of amino acid

ロール濃度をまとめた。血清総コレステロール濃度は，Components

Contents (g/100 g)

Arginine
LysineHistidine
Phenylalanine
Tyrosine
LeucineIsoleucine
Methionine
ValineAlanineGlycineProlineGlutamic acid
SerineThreonine
Aspartic acid
Tryptophan
Cystine0.340.270.160.10n.d.
0.200.110.070.17
1.040.77
1.351.74
0.24
0.27
0.56
0.020.08

T群，P-III 群は HC 群に比較して有意に低い値を示した。
同様に，肝臓コレステロール濃度は T群，P-III群は HC群に比較して低い傾向にあった。なお，血清 HDL-コレス
テロール濃度は各群に有意な差は認められなかった。タウリンにはコレステロール低下作用があることが言われており，本実験においてもこの作用を確認することができた。
今回，すべての指標において T群，P-III群の間に有意な差は認められなかった。このことは，牡蠣肉エキス製造過程で生成される廃棄物から，濃縮，冷却という簡便な方法により得られた P-IIIに含有されるタウリンが，生物的機能を保った状態で回収されていることを意味している。組織中タウリン濃度において，肝臓，全血では T

Table 3 Body and tissue wet weights (g) of rats fed experimental diets
HCWhole bodyLiverHeart
Brain
Eyes

Ta

238 ± 5a14.4 ± 6.7
a0.82 ± 0.04
a1.79 ± 0.05
a0.21 ± 0.01

P-III
a237 ± 11a13.7 ± 1.2
a0.89 ± 0.07
a1.82 ± 0.06
a0.20 ± 0.02a

231 ± 10a13.5 ± 1.6
a0.84 ± 0.07
a1.81 ± 0.08
a0.21 ± 0.01

Values are means ± SD (n = 8). Values in the same row not sharing a common
superscript differ significantly (p < 0.05).

Table 4 Taurine concentrations in several tissues of ratsHCLiver (mg/g)
Heart (mg/g)
Brain (mg/g)
Muscle (mg/g)
Eyes (mg/g)
Blood (µg/ml)
Serum (µg/ml)

Ta

0.58 ± 0.14
a3.37 ± 0.22
a0.69 ± 0.04
a1.85 ± 0.19
a1.30 ± 0.05
a50 ± 4a34 ± 5P-III
ab1.06 ± 0.29
a3.37 ± 0.35
a0.73 ± 0.06
b2.83 ± 0.29
b1.46 ± 0.10
b59 ± 7a46 ± 14b

1.31 ± 0.51
a3.45 ± 0.16
a0.72 ± 0.07
b2.71 ± 0.25
b1.48 ± 0.11
b66 ± 10a47 ± 12

Values are means ± SD (n = 8). Values in the same row not sharing a common
superscript differ significantly (p < 0.05).

― 91 ―

Trace Nutrients Resezrch 23:89-92(2006)

Table 5 Cholesterol concentrations in serum and liver of rats
HCT

Serum total cholesterol(mg/dl)347 ± 53

Serum HDL-cholesterol(mg/dl)27 ± 4

Liver total cholesterol(mg/g wet weight)

73 ± 11baaP-III

268 ± 47a

257 ± 3530 ± 7a28 ± 561 ± 6a61 ± 13

aaa

Values are means ± SD (n = 8). Values in the same row not sharing a common
superscript differ significantly (p < 0.05).

群より P-III群のほうが高い傾向が見られた。これは，P-IIIの乾燥粉末のタウリン濃度は約70％であり，タウリン以外の物質が含まれるので，P-III のほうが効率良く吸収された可能性が考えられる。われわれは，P-IIIをさらに精製することにより結晶タウリンを得ることに成功しており，今後このカキ由来の結晶タウリンの有効利用を検討していきたい。

参考文献
1）Howe EE, Bosshardt DK（1962）A study of experimental hypercholesterolemia in the mouse. J Nutr. 76: 242−246.
2）Yokogoshi H, Mochizuki H, Nanami K, Hida Y, Miyachi F, Oda H（1999）Dietary taurine enhances cholesterol
degradation and reduces serum and liver cholesterol concentrations in rats fed a high-cholesterol diet. J Nutr.
129: 1705−1712.
3）Matsuyama Y, Morita T, Higuchi M, Tsujii T（1983）The effect of taurine administration on patients with acutehepatitis. Prog Clin Biol Res. 125: 461−4688.
4）タウリンの抽出方法

特許第 3819000 号．

5）Allain CC, Poon LS, Chan CS, Richmond W, Fu PC（1974）Enzymatic determination of total serum cholesterol.
Clin Chem. 20: 470−475.
6）Danno H, Jincho Y, Budiyanto S, Furukawa Y, Kimura S（1992）A simple enzymatic quantitative analysis oftriglycerides in tissues. J Nutr Sci Vitaminol 38: 517−521.
7）萱島知子，片山徹之（2004）高コレステロール食摂取ラットにおける食餌レクチンの血清コレステロール低下作用．
微量栄養素研究 21 ： 43−49.
8）Burstein M, Scholnick HR, Morfin R（1970）Rapid method for the isolation of lipoproteins from human serum byprecipitation with polyanions. J Lipid Res. 11: 583−95.

― 92 ―