DOCUMENT
D’ORIENTATION H
PROTECTION INTEGREE DES CULTURES (PIC)
Version 1© 2020 Rainforest Alliance. Tous les droits sont réservés.

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Nom du document :Code dudocument :Version :Document d’orientation H : Protection
Integrée des Cultures (PIC)

SA-G-SD-9-V1

1

Date de lapremière
publication :Date de révision : Valable à partir
du :Expire le :31 décembre 2020

N/A

Jusqu’à nouvel ordre

31 décembre 2020

Élaboré par :Approuvé par :Département Standards and Assurance
de Rainforest AllianceDirecteur des Standards and Assurance

Lié à
SA-S-SD-1-V1.1 Norme pour l’agriculture durable 2020 de Rainforest Alliance,
Exigences pour les exploitations agricoles
SA-GL-SD-V1.1 Annexe 1 : Glossaire
SA-S-SD-8-V1.1 Annexe 7 : Gestion des pesticides
RA-P-SP-7-V2.4 : Utilisation exceptionnelle des pesticides hautement dangereux selon
la FAO/WHO

Remplace :N/AApplicable à :Titulaires de certificats d’exploitations agricoles
Pays/Région :Tous

Produit agricole :Type de certification :Tous les produits agricoles du champ
Certification de l’exploitation
d’application du système de certificationde Rainforest Alliance ; veuillez voir lesRègles pour la certification.

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SA-G-SD-9-V1

TABLE DES MATIÈRES
Objectif .................................................................................................................................................. 4Champ d’application .......................................................................................................................... 4
Public ...................................................................................................................................................... 4
Définitions contraignantes liées à la protection intégrée des cultures tirées du glossaire .......... 4
Introduction ........................................................................................................................................... 5
Exigences relatives à la PIC dans la norme ....................................................................................... 8
Mise en œuvre des exigences ............................................................................................................ 8
Exigence principale 4.5.1 ................................................................................................................. 8
EXEMPLE DE QUESTIONS POUR Développer une bonne stratégie de PIC ................................... 10
Exigence principale 4.5.2 ............................................................................................................... 11
Exigence principale 4.5.3 ............................................................................................................... 14
Exigence principale 4.5.4 ............................................................................................................... 20
Amélioration obligatoire 4.5.5 (L1) ................................................................................................ 20
Amélioration obligatoire 4.5.6 (L2) ................................................................................................ 23
Généralités ....................................................................................................................................... 23
Compteur intelligent obligatoire 4.5.7 .......................................................................................... 24
Lutte intégrée contre les adventices ............................................................................................... 25
Conseils spécifiques au caféier......................................................................................................... 26
Ravageurs courants du caféier ..................................................................................................... 29
Maladies courantes du caféier ..................................................................................................... 43
Informations complémentaires ..................................................................................................... 51
Conseils spécifiques au théier ........................................................................................................... 52
Ravageurs courants du théier ....................................................................................................... 54
Maladies courantes du théier........................................................................................................ 63
Informations supplémentaires sur les maladies des racines ...................................................... 70
Conseils spécifiques au cacaoyer .................................................................................................... 72
Ravageurs courants du cacaoyer ................................................................................................ 75
Maladies courantes du cacaoyer ................................................................................................ 88
Conseils spécifiques au bananier ..................................................................................................... 97
Ravageurs courants du bananier ................................................................................................. 99
Maladies courantes du bananier ............................................................................................... 112
Ennemis naturels des ravageurs et maladies du bananier (Musa AAA). ............................... 125
Ressources sur la PIC ........................................................................................................................ 138
Modèle du type minimum d’informations à enregistrer pour la stratégie de PIC .................... 138
Exemples d’ennemis naturels .......................................................................................................... 139

3SA-G-SD-9-V1

OBJECTIF
Ce document d’orientation vise à fournir des connaissances de base sur la protection
intégrée des cultures afin d’aider les agriculteurs à comprendre et à mettre en œuvre lesexigences de la norme pour une agriculture prospère et durable.

CHAMP D’APPLICATION
Ce document d’orientation se concentre sur la section 4.5 PROTECTION INTÉGRÉE DES
CULTURES (PIC) de la norme. Il examine en détail les principaux processus qui affectent
l’apparition de ravageurs et les différentes méthodes de lutte disponibles pour s’en protéger
dans un système agricole durable. Dans ce document d’orientation, le terme RAVAGEUR
désigne les arthropodes, les rongeurs, les maladies et les adventices. Parfois, les interventions
sont spécifiques à des types particuliers de ravageurs.

PUBLICCe document d’orientation est destiné au personnel technique qui prépare les groupesd’agriculteurs (ou les propriétaires de plantations) à la certification, afin de les aider à
comprendre l’importance des exigences de la norme et la meilleure façon de les mettre enœuvre dans leurs circonstances particulières. Le document doit également servir dedocument d’orientation pour les inspecteurs internes/auditeurs, qui vérifient la conformitépar rapport aux exigences, pour être mieux capables d’évaluer la situation sur le terrain demême que celle de la durabilité des pratiques de gestion des agriculteurs dansl’environnement agroécologique donné.

DEFINITIONS CONTRAIGNANTES LIEES A LA PROTECTION
INTEGREE DES CULTURES TIREES DU GLOSSAIRE
Ingrédients actifs : Un pesticide comporte plusieurs substances. L’ingrédient actif est le
produit chimique qui peut tuer, repousser, attirer, atténuer ou lutter contre un ravageur. Les
autres substances peuvent aider cet effet soit directement soit indirectement.
Produits agrochimiques : Composants chimiques habituellement synthétiques et produits demanière commerciale utilisés dans la production agricole, tels que les engrais, les pesticides,
les régulateurs de croissance, les nématicides ou les amendements pour les sols.
Protection intégrée des cultures ou PIC : La prise en compte attentive de toutes lestechniques disponibles de lutte contre les ravageurs et de l’intégration qui en résulte desmesures appropriées qui découragent le développement des populations de ravageurs, demême que le fait d’utiliser les pesticides et autres interventions à des niveaux qui sontéconomiquement justifiés et qui réduisent ou minimisent les risques pour la santé humaine etl’environnement. La PIC met l’accent sur la croissance des cultures et du bétail en bonne
santé avec le moins d’interruption possible des écosystèmes agricoles et encourage lesmécanismes naturels de lutte contre les ravageurs. L’application des pesticides se base sur lesuivi des maladies ou les infestations de ravageurs.
Ennemis naturels : Organismes qui tuent d’autres organismes, diminuent leur potentiel
reproductif ou en réduisent le nombre. Dans la production agricole, les ennemis naturels sontdes composantes clés des programmes de protection intégrée des cultures. Les ennemis
naturels importants des insectes et des mites ravageurs sont les prédateurs, les parasites et lesagents pathogènes.

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Ravageur : Toute espèce, souche ou biotype d’une plante (adventice), d’un animal (parexemple, nématode, insecte, arthropode, rongeur) ou d’un agent pathogène (microorganisme, tel que champignon, bactérie et virus) nuisible pour les plantes ou pour les
produits à base de plantes.
Pesticide : Toute substance ou mélange de substances d’ingrédients chimiques ou
biologiques, visant à repousser, détruire ou lutter contre les ravageurs, incluant les espècesnon désirables de plantes ou d’animaux causant des dommages ou interférant durant laproduction, le traitement, le stockage, le transport ou le commerce de la nourriture et desproduits agricoles.
Le terme comprend les substances à utiliser comme défoliants, déshydratants ou agentsd’éclaircissage des fruits ou comme préventifs à la tombée prématurée des fruits. Lespesticides sont aussi utilisés en application sur les cultures soit avant soit après la récolte afin
de protéger les produits agricoles de la détérioration durant le stockage et le transport.
Niveaux seuils : Le niveau maximum de dommages (ou symptômes de dommages)
provoqués par un ravageur ou une maladie sur/dans une plante ou une population deplantes qui peut être accepté avant que des mesures particulières soient prises pour lutter
contre le ravageur ou la maladie. Si les dommages augmentent, les pertes économiques
seront supérieures aux coûts de lutte.

INTRODUCTION
Dans ce document d’orientation, les exigences de la norme sont présentées avec tous les
indicateurs pertinents et expliquées en détail. Les termes soulignés dans les exigences sontdéfinis dans le glossaire. Les termes spécifiquement liés à la protection intégrée des culturessont présentés au Chapitre A de ce document ; il est primordial de consulter le glossaire lorsde la mise en œuvre des exigences de la norme.
Ce document d’orientation sur la PIC n’entend pas couvrir tous les ravageurs ou cultures
possibles. L’objectif est de présenter les ravageurs les plus courants qui affectent les
principales cultures certifiées par Rainforest Alliance dans différentes régions du monde.

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À quoi sert la protection intégrée des cultures ?
L’utilisation inconsidérée de pesticides dans l’agriculture est associée à des effets négatifs sur
l’environnement et la santé humaine, ainsi qu’à une perte de biodiversité, en particulier dansle Sud.
L’arrivée des pesticides de synthèse a permis de cultiver de grandes quantités de nourriture,mais a également entraîné une simplification des écosystèmes, les rendant moins résilients etplus dépendants des intrants extérieurs tels que les pesticides et les engrais de synthèse. Il est
urgent de réduire l’utilisation des pesticides dans l’agriculture, non seulement pour éviter leseffets secondaires sur l’homme et l’environnement, mais aussi pour éviter les problèmes derésistance des ravageurs et la création de nouveaux ravageurs.
Les pesticides sont fréquemment appliqués par habitude ou dans des situationsd’incertitude, qu’il y ait ou non des ravageurs et indépendamment de leurs besoins réels.
Cela peut créer un cercle vicieux de déséquilibre de l’écosystème, entraînant au fil dutemps la résistance et la résurgence des ravageurs, ainsi que des épidémies secondaires deravageurs. Cela peut à son tour mener au besoin d’utiliser des méthodes encore plus
agressives pour gérer les problèmes.

Figure 1. Bandes fleuries pour améliorer la lutte naturelle contre les ravageurs. Photos : Jack Kelly Clark et RachaelLong. Source photo : UC Statewide IPM program Regents, Université de Californie.

La mise en œuvre des programmes de Protection Intégrée des Cultures (PIC) est la clé pourréduire efficacement l’utilisation des pesticides. Une bonne mise en œuvre de la PIC est
synonyme d’investissement dans l’avenir de l’agriculture durable.
Un programme de PIC solide a besoin d’un changement dans la façon de penser lespratiques agronomiques et d’une amélioration continue du système de l’exploitation
agricole, ce qui signifie pour certains produits agricoles un changement graduel et pourd’autre un changement plus systémique de la gestion des ravageurs et des maladies ou del’agro-écosystème entier.

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Que se passe-t-il si les pesticides sont appliqués en première intention pour lutter contre lesravageurs, les maladies et les adventices ?
Si les pesticides sont utilisés en première intention pour lutter contre les ravageurs, ou commemesure préventive, leurs ennemis naturels seront également tués, ce qui entraînera desproblèmes de ravageurs encore plus importants, comme la résistance aux ravageurs. Cela
peut également entraîner une augmentation du nombre de nouveaux ravageurs, car lesautres ennemis naturels ont été tués. Cependant, le fond du problème persiste, car les
facteurs qui permettent l’apparition de ces parasites dans les exploitations sont toujours
présents. Il s’agit notamment de facteurs tels qu’un sol de mauvaise qualité, des cultures mal
nourries ou sensibles aux ravageurs et aux maladies, des conditions météorologiques
propices aux ravageurs ou une biodiversité insuffisante dans l’exploitation agricole.
La bonne intervention consisterait à empêcher l’apparition du ravageur dans l’exploitation
agricole dès le départ.
Quels sont les avantages de la PIC ?
• Vous préservez la biodiversité et le risque de contamination humaine etenvironnementale est réduit. La préservation de la biodiversité est essentielle pourprévenir les problèmes liés aux ravageurs.
• Les pertes de récoltes et les coûts liés à la gestion des ravageurs sont réduits, car lesmesures de lutte contre les ravageurs et l’utilisation des intrants sont optimisées.
• On évite d’utiliser inutilement des pesticides.
• Le développement de la résistance des ravageurs aux pesticides est réduit.
• La production agricole est plus stable dans le temps et la productivité est améliorée.

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EXIGENCES RELATIVES A LA PIC DANS LA NORME
AperçuDans la section sur la protection intégrée des cultures de la norme (4.5), il y a quatre
exigences fondamentales, deux exigences d’amélioration obligatoire et une exigence
relative aux compteurs intelligents1.

MISE EN ŒUVRE DES EXIGENCES
EXIGENCE PRINCIPALE 4.5.1
La direction met en œuvre la stratégie de PIC élaborée par un professionnel compétent. La
stratégie de PIC contient des mesures de prévention, de suivi et d’intervention dans lechamp d’application de l’exploitation agricole totale, dont les installations detransformation. La stratégie se base sur les conditions climatiques, les résultats du suivi desravageurs, les actions de PIC mises en œuvre et les données des applications de pesticides.
La stratégie de PIC est mise à jour annuellement.

Objectif
Mise en place d’une stratégie de PIC qui réduit les pertes de rendement dues aux parasites,
réduit ou optimise l’utilisation des pesticides et augmente la rentabilité.

Applicabilité
L’exigence principale s’applique à la direction du groupe et aux grandes exploitations sous
certification de groupe ainsi qu’aux titulaires de certificat individuels. La direction du groupe
est responsable du développement de la stratégie de PIC pour ses membres et les soutient
dans sa mise en œuvre. La mise en œuvre de la stratégie de PIC (telle que développée parla direction du groupe) par les petites exploitations agricoles est requise dans la section 4.5.5
L1.

Mise en œuvre

Une stratégie de PIC n’est pas une
Pour mettre en œuvre la protection intégrée desstratégie d’éradication, mais une
cultures au niveau de l’exploitation agricole, ilstratégie de gestion des populations
est utile de développer une stratégie de PIC. Unede ravageurs sur le long terme pourstratégie de PIC est élaborée pour un contexte
spécifique et tient compte des aspects
minimiser les infestations et leurenvironnementaux et économiques d’une
impact économique.
région et/ou d’une exploitation agricole
spécifique. Elle se base donc sur la réalité des exploitations agricoles, et des pratiques sur leterrain. Une stratégie de PIC doit toujours viser à prévenir l’apparition de ravageurs et donnerla priorité à la croissance d’une culture saine, à la conservation/au renforcement desennemis naturels, au suivi régulier de la culture, à la réduction de l’utilisation de produits
chimiques, par exemple en ne suivant pas de calendrier de pulvérisation, mais en basantl’utilisation de produits chimiques sur les besoins observés dans l’exploitation agricole.

1 Exigence principale :Ce sont les exigences qui doivent toujours être respectées afin d’obtenir la certification. La plupart des exigences principales

prescrivent des bonnes pratiques par rapport aux sujets à risques principaux de durabilité et sont formulées en tant qu’exigences de conformité (unsystème binaire réussite/échec). Exigence d’amélioration obligatoire : Conçue pour mieux promouvoir et mesurer le progrès. Les exigences d’amélioration
obligatoire doivent être incluses dans la conformité de la norme au fur et à mesure que le producteur ou le groupe de producteurs progresse dans son
parcours de la durabilité. Exigences de compteurs intelligents : Les Compteurs intelligents visent à donner aux agriculteurs une manière structuréed’incorporer l’amélioration continue à des données spécifiques au contexte. Les Compteurs intelligents n’ont pas de cibles prédéfinies fixées par Rainforest
Alliance. En revanche, les producteurs eux-mêmes fixent les cibles pour ces indicateurs et définissent les actions adéquates à entreprendre pour réaliser
ces améliorations. Les producteurs conduisent une évaluation de référence et définissent les cibles pour ces indicateurs pour l’année 0 ou l’année 1 (enfonction de l’exigence), planifient et mettent en œuvre des actions pour pouvoir atteindre ces cibles et font ensuite le suivi des progrès en direction descibles. Les producteurs utilisent les données des indicateurs pour réfléchir annuellement sur leurs progrès et pour adapter les activités dans le cas où peu ou
aucun progrès n’est montré. Une boucle de feedback est ainsi donnée aux producteurs de manière à ce qu’ils puissent améliorer continuellement leurspratiques.

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Les éléments clés de la stratégie de PIC :•••Prévention et suppression des ravageurs
Surveillance des ravageurs pour identifier leur présence et évaluer si une intervention
est nécessaire (sur la base de seuils)
Intervention : déterminer les actions de lutte contre les ravageurs comme lespratiques culturales, les mécanismes physiques et biologiques, ou les pesticides nonréglementés à faible toxicité.

Vous trouverez sur ce lien un exemple de stratégie de PIC contre les pucerons :http://ipm.ucanr.edu/PMG/PESTNOTES/pn7404.html

Prévention

PIC
Intervention

Suivi

1. La PRÉVENTION et la suppression des ravageurs visent à empêcher l’augmentation
du nombre de ravageurs.
Les mesures préventives sont toujours prioritaires dans une stratégie de PIC. Les activités
incluent, entre autres :
•
•
•
•
•
•

•
•
•

Utiliser du matériel végétal tolérant ou résistant et éviter les variétés de plants qui
attirent les principaux ravageurs
Prévenir l’introduction de ravageurs dans l’exploitation agricole : conserver dumatériel végétal sain, y compris dans les pépinières
Ne pas planter la culture dans des zones de l’exploitation où les ravageurs peuvent
s’accumuler
Éliminer les hôtes alternatifs des insectes nuisibles et des maladies (désherbage
sélectif)Empêcher la propagation des ravageurs entre les différents champs de l’exploitation
agricole (nettoyage du matériel, des vêtements, etc. entre les visites de champs)Empêcher les ravageurs de se développer dans les champs de l’exploitation agricole(rotation des cultures, irrigation appropriée, espacement correct des plants,prévention de la reproduction des adventices, maintien d’un bon niveaud’ombrage)
Effectuer une fertilisation appropriée sur la base d’analyses du sol, en conservant un
sol sain avec une teneur en matière organique adéquate
Pas de travail du sol (le cas échéant)Préserver et renforcer les ennemis naturels des ravageurs en limitant l’application depesticides ou en augmentant la diversification spatiale et temporelle, par exemple
en conservant des paillis vivants ou en préservant des zones de végétation naturelle
dans ou autour du champ qui serviraient de refuge et de source de nourriture aux
ennemis naturels des ravageurs.

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••Utiliser des cultures pièges et/ou des pièges à phéromones
Gérer les résidus de culture

2. Surveillance des ravageurs : savoir si, quand et comment les interventions doiventêtre utilisées pour contrôler l’accumulation des populations de ravageurs afin d’éviter
les pertes économiques.
Consultez l’exigence 4.5.2 pour en savoir plus
3. Intervention : il s’agit d’une action visant à contrôler le nombre de ravageurs et à
réduire leurs populations. Également appelée mesure de lutte
Consultez l’exigence 4.5.3 pour en savoir plus

EXEMPLE DE QUESTIONS POUR DEVELOPPER UNE BONNESTRATEGIE DE PIC
Prévention :- Identifiez si le matériel végétal est sensible ou tolérant à un ravageur ou à une
maladie. Est-il le principal ravageur dans votre région d’un point de vueéconomique ?
- Quels sont les ravageurs les plus importants sur le plan économique dans votre
exploitation agricole ?
- Identifiez les zones de l’exploitation susceptibles d’être attaquées par des ravageurs.
- Identifiez la cause sous-jacente (faible fertilité du sol, fertilisation incorrecte [nonbasée sur une analyse du sol], érosion, engorgement ou sécheresse, conditions delumière défavorables, température inadaptée, variété de culture inadaptée,monoculture, etc.). Prévoyez des mesures préventives pour modifier ces conditions :ajustez la fertilisation, ajoutez de la matière organique, ajustez les conditions
microclimatiques, ajoutez de la diversité végétale.
- Identifiez les parasites courants (insectes nuisibles et maladies, adventices) qui sontrégulièrement sources de problèmes.
- Identifiez les conditions favorables à l’augmentation des incidents liés aux ravageurs(période de l’année ou cycle de culture, conditions humides ou sèches, fluctuationsde température, etc.). Vous devez redoubler de vigilance lorsque ces conditions seprésentent.
- Conservez toujours des zones de végétation naturelle (en vous assurant qu’il n’y apas d’hôtes alternatifs du ravageur), de préférence avec des plantes à fleurs et unbon mélange d’arbustes et de buissons qui peuvent servir de refuge et de source denourriture aux ennemis naturels.
Suivi
-

-

Établissez des procédures et des calendriers de suivi et de repérage des principaux
ravageurs : répondez aux questions suivantes : combien d’arbres ou de plants
doivent être surveillés par hectare ? À quelle fréquence ?
Examinez-les régulièrement (au minimum toutes les deux semaines) et notez leurnombre et leur niveau d’infestation, ainsi que la date et le lieu de l’échantillonnage.
Identifiez les principaux ennemis naturels du ravageur et enregistrez leur nombre, leurstade de vie ainsi que la date et le lieu de l’échantillonnage
Conservez les enregistrements des résultats de suivi dans le contexte des conditions
sous-jacentes (stade de la culture, état de la culture, emplacement, climat,
conditions météorologiques dominantes, température et fluctuations de température
jour/nuit, etc.)
Cherchez et retenez les seuils des ravageurs les plus importants de votre exploitation
agricole. Définissez le niveau seuil à partir duquel la culture ne peut plus tolérer laprésence du ravageur et à partir duquel la perte causera un dommage économiquesupérieur au coût de l’intervention choisie

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Intervention
Intervenez UNIQUEMENT lorsque les seuils économiques le nécessitent. Tout d’abord, utilisez
toujours des options non chimiques :-Identifiez les méthodes de lutte possibles pour chaque ravageur dans l’ordre depréférence suivant :1. Pouvez-vous gérer le ravageur en utilisant de bonnes pratiques agricoles commela gestion de la fertilité du sol, la gestion adéquate de l’ombrage et de l’eau, lastimulation des ennemis naturels.
2. Méthodes de lutte mécanique et culturale : taille des parties de plants infestées,assainissement général des cultures, élimination physique ou collecte desinsectes, désherbage manuel. Le piégeage est-il une possibilité ? Existe-t-il desphéromones et des systèmes de piégeage du ravageur ? Pouvez-vous
physiquement couvrir les fruits ?
3. Contrôle biologique (des ravageurs) : pouvez-vous acheter des ennemis naturels
disponibles dans le commerce et les relâcher dans votre exploitation agricole ?
Pouvez-vous faire quelque chose pour améliorer la conservation de la biodiversitéet créer des zones où les ennemis naturels peuvent vivre et se nourrir ? L’ennemi
naturel peut ne pas être présent dans votre exploitation parce qu’il lui manqueson habitat. Le fait de fournir cet habitat et de la nourriture à l’ennemi naturel
peut l’inciter à s’établir.
4. Les pesticides « doux » ou ceux dont l’utilisation est approuvée en agriculture
biologique : l’application de solutions savonneuses ou d’extraits d’ail, de pimentou de neem ou d’autres extraits de plantes est-elle une option ?
5. Application ponctuelle de pesticides chimiques dont la toxicité est la plus faible
possible, en suivant les instructions de l’étiquette. Veuillez noter que lesapplications ponctuelles de nématodes sont difficiles à réaliser.
6. Des pesticides chimiques présentant une toxicité aussi faible que possible et unesélectivité aussi élevée que possible. N’appliquez pas les produits chimiques
figurant sur la liste des pesticides interdits de RA et évitez les pesticides figurant sur
la liste d’atténuation des risques. Si cela n’est pas possible, veuillez suivre toutes lesmesures d’atténuation des risques indiquées.
Utilisez les enregistrements pour mieux comprendre l’occurrence des incidents liés
aux ravageurs et les causes sous-jacentes et pour améliorer continuellement votre
stratégie de PIC. La stratégie de PIC doit être revue chaque année

EXIGENCE PRINCIPALE 4.5.2
Les producteurs font régulièrement le suivi des ravageurs et de leurs principaux ennemis
naturels. Les archives des suivis sont conservées par les grandes exploitations agricoles et parla direction du groupe d’un échantillon représentatif des producteurs. Les archives
contiennent les dates, les lieux, le type de ravageurs et les insectes bénéfiques2.

Objectif
Évaluer la gravité des infestations de ravageurs et la présence d’ennemis naturels pouréclairer la décision sur les interventions de PIC.

Applicabilité
Cette exigence fondamentale est applicable à tous les types de producteurs. Cela
concerne les petites exploitations, les grandes exploitations et la direction du groupe dans lecadre de la certification de groupe, ainsi que les titulaires de certificat individuel.

2 Dans ce guide, le terme « insecte bénéfique » doit s’entendre comme « ennemi naturel », car il ne s’agit pas seulement d’insectes, mais aussi d’autresorganismes qui effectuent une lutte biologique.

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En cas de certification de groupe, la direction du groupe est responsable de la tenue desregistres d’un échantillon représentatif de producteurs.

Mise en œuvre
Après la prévention des nuisibles (voir ci-dessus), le deuxième élément le plus importantd’une stratégie de PIC est le suivi. Il s’agit notamment d’inspecter les champs et de repérer3
sur le site les signes précoces de l’apparition d’éventuels ravageurs, de maladies ou
d’adventices agressives afin d’éviter toute propagation. Les agriculteurs et les conseillers
doivent inspecter régulièrement les exploitations agricoles et les cultures, en particulier
pendant les périodes du cycle végétatif connues pour être sensibles ou pendant lesconditions météorologiques qui ont été identifiées comme favorisant l’apparition deravageurs, de maladies et d’adventices.
Il est également très important de surveiller les ennemis naturels des ravageurs. Là où il y a
des ennemis naturels, les ravageurs ne pourront pas se reproduire et devenir incontrôlables.
Les ennemis naturels peuvent être des prédateurs, des parasitoïdes ou des micro-organismescomme les champignons, les bactéries et les virus ou les insectes qui mangent lesadventices. Il est important d’observer si vous voyez 10 insectes nuisibles seuls ou si vous
voyez 10 insectes nuisibles ensemble avec deux ennemis naturels. Il est essentiel de savoir
que les ennemis naturels sont présents afin d’éclairer votre choix d’interventions. Voir lechapitre H pour des exemples sur les ennemis naturels.
Le repérage peut se faire visuellement en sélectionnant un certain nombre de plants ou
d’arbres et en les inspectant de manière aléatoire en s’assurant de couvrir tout le champpour ne pas passer à côté des ravageurs/ennemis naturels qui se regroupent à certains
endroits. La surveillance doit suivre une approche systématique (toujours utiliser le mêmeschéma de repérage et la même méthode d’échantillonnage appropriés pour le ravageur[ou le stade de vie spécifique]). Il est recommandé de développer des protocoles sur lafaçon de repérer tous les ravageurs et les ennemis naturels et de les inclure dans la stratégiede PIC. Il est également nécessaire de former les agriculteurs et le personnel technique aurepérage des ravageurs.
Un autre moyen moins précis de surveiller les insectes nuisibles est d’utiliser des pièges
collants ou des pièges à phéromones, mais leur précision doit être vérifiée en fonction devotre problème particulier de ravageurs.
Le suivi ne suffit pas. Il est essentiel de noter (écrire) ce qui est observé. Il est important deconcevoir un modèle qui collecte les informations relatives aux conditions et circonstances
spécifiques de l’exploitation, notamment la prévalence/le niveau d’infestation desravageurs, des maladies et des adventices observés. Notez toujours :•••Le type de ravageurs et/ou d’ennemis naturels observés
Le nombre de ravageurs par arbre ou plant ou leur niveau d’infestation observé
La date et l’heure de l’échantillonnage et l’endroit où les données ont été recueillies
ou l’endroit où se trouvait le piège

Assurez-vous de suivre et d’enregistrer, aussi fréquemment que possible la progression del’infestation et d’éviter que les ravageurs ne deviennent incontrôlables. Commencez à noter
ces informations le plus tôt possible dans la saison et prêtez attention à tous les ravageurs(potentiels), même s’ils ne sont encore présents qu’en très petit nombre et dans des endroits
spécifiques. Des registres précis et à jour aident à programmer les futures visites de suivi etservent d’indicateurs pour savoir quand intervenir avec des mesures de lutte.

3 Le repérage consiste à inspecter un champ pour détecter la présence de ravageurs (y compris les insectes, les adventices et les agents pathogènes) ; lesuivi consiste à observer le champ de manière régulière pour savoir comment les populations de ravageurs évoluent au fil du temps

12SA-G-SD-9-V1

Recommandation aux groupes :Prenez note des nuisibles trouvés dans la zone4 et identifiez-les. Recueillez des informations surleurs stades de vie, leurs cycles d’alimentation et de reproduction, et les symptômes de leurprésence sur les cultures. Pour les maladies, demandez des conseils et des informations aux
bureaux agricoles gouvernementaux, aux experts en protection des végétaux ou à d’autres
sources pour identifier la maladie, sa cause et les voies possibles de transmission de lamaladie. Fournissez ces informations à tous les agriculteurs, de préférence avec desillustrations ou sous forme de spécimens vivants. Identifiez les périodes et les conditions danslesquelles ces ravageurs deviennent généralement envahissants et établissez un plan de suivi
ou de repérage en conséquence. Inscrivez ces informations dans la stratégie de PIC.

Exemple de calendrier de suivi et de rapport :Dans une plantation de caféier en Colombie, le plan de suivi du scolyte du fruit du caféier aété établi. La personne chargée de l’échantillonnage a parcouru l’exploitation en zigzag et
a prélevé au hasard 30 arbres par hectare. Pour chaque arbre échantillonné, une branche
représentative de la section centrale de l’arbre a été sélectionnée et toutes les baies endéveloppement ont été examinées à la recherche de trous d’entrée du scolyte du fruit ducaféier5. Le nombre de baies totales par branche et le nombre de baies infestées ont été
enregistrés. Le niveau d’infestation est calculé comme le pourcentage de baies infestées sur
le total des baies échantillonnées.
Vous trouverez ci-dessous un exemple de modèle pour enregistrer des informations sur les
ravageurs et les ennemis naturels du caféier.

Nom de l’exploitation agricole : _______________________ Parcelle/lieud’échantillonnage :_______________
Nom de la personne qui collecte les données : _______________________Ravageur : Scolyte du fruit du caféier
DateArbre/plant

Nombres

Remarques

3 juin 2020

1

30 baies
avec destrous

2

5 baies
avec destrous

Début delapénétration
dans labaie
SFC àl’intérieur

10 juin 2020

17 juin 2020

…..
30
1
….
30
1
….
30

1

Nombres

Remarques

5 baies
infestéespar leSFC

Scolyte
mort

non

non

EnneminaturelTrichoderma

Nombres0

Ravageur : Rouille des feuilles du caféier
DateArbre/plant Nombres
3 juin 2020

EnneminaturelBeauveriabassiana

5 feuilles
avec unRemarques

Remarques

4 Pour déterminer le pourcentage d’infestation, des échantillons (par exemple des feuilles) doivent être prélevés au hasard sur la zone et les incidents dedommages/infestation/nombre de parasites, etc. doivent être comptés. Exemple de calcul : 35 sur 100 = 35 % d’infestation.
5 Mise en œuvre d’un programme de protection intégrée des cultures contre le scolyte du fruit du caféier dans une plantation de caféier de spécialité en
Colombie ; Luis F. Aristizábal, et al ; Journal of integrated pest management, volume 3, numéro 1, 1er mars 2012, pages g1-g5

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nombre X
de pustules

10 juin 2020

17 juin 2020

2
…..
30
1
….
30
1
….
30

non

non

0

Remarque : veuillez noter qu’il existe des exemples de protocoles pour chaque ravageur. Informezvous sur la bonne façon de procéder et le nombre d’échantillons avant de commencer le suivi
Veuillez noter que la lutte contre les ravageurs et les ennemis naturels doit être effectuée au moins
toutes les deux semaines : Idéalement, lorsque les conditions/la période de l’année sont propices àla propagation du ravageur/de la maladie, cette opération devrait être effectuée chaquesemaine.

EXIGENCE PRINCIPALE 4.5.3
Pour la prévention et la lutte contre les ravageurs, les producteurs utilisent en premier lieu desméthodes biologiques et mécaniques, ainsi que d’autres méthodes non chimiques etdocumentent l’utilisation et l’efficacité de ces méthodes. Lorsque des niveaux seuils deravageurs sont atteints, les producteurs peuvent faire des applications de produits chimiques,conseillés par un technicien compétent et/ou suivant les conseils ou l’instruction d’uneorganisation officielle nationale. Lorsque des produits chimiques sont utilisés :• Les produits chimiques possédant la plus basse toxicité et la plus haute sélectivité sontutilisés• Les applications sont faites uniquement sur les plants et zones impactés• Les ingrédients actifs sont alternés pour éviter et réduire la résistance• Les pulvérisations programmées dans un calendrier sont évitées et ne sont permises
que lorsqu’elles sont recommandées par un technicien compétent ou uneorganisation officielle nationale.

Objectif
Les méthodes de prévention et de lutte non chimiques sont utilisées en premier lieu. Lesniveaux seuils sont utilisés pour décider quand utiliser la lutte chimique et, le cas échéant,s’assurer que les applications chimiques ne nuisent pas aux personnes ou à l’environnement.

Applicabilité
L’exigence principale s’applique aux petites et aux grandes exploitations agricoles sous
certification de groupe ainsi qu’aux titulaires de certificat individuels.

Mise en œuvre
S’agissant d’une exigence complexe, nous avons divisé les explications en trois parties.
Partie I : Méthodes de prévention et de lutte non chimiques.
Partie II : Niveaux seuils.
Partie III : Conditions préalables à l’application de produits agrochimiques.
Partie I : Pour la prévention et la lutte contre les ravageurs, les producteurs utilisent enpremier lieu des méthodes biologiques et mécaniques, ainsi que d’autres méthodes nonchimiques et documentent l’utilisation et l’efficacité de ces méthodes.
Il existe de nombreuses alternatives en matière d’interventions non chimiques de prévention
et de lutte. Ces éléments doivent être pris en compte avant même de commencer à penser
à la lutte chimique (applications de pesticides). Il s’agit d’interventions culturelles,mécaniques, culturales et biologiques.

14
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Lutte mécanique
Il s’agit de méthodes de lutte visant à utiliser les caractéristiques mécaniques del’environnement ou à utiliser des méthodes mécaniques pour blesser les ravageurs ou réduireles populations de ravageurs. Par exemple, la température, ou les barrières physiques, ou
l’eau appliquée avec pression, la coupe, le hachage, etc.
Il existe de nombreuses méthodes différentes de lutte mécanique. Parmi ces méthodes, onretrouve :
•
•
•

•
•
•
•
•

La manipulation des conditions microclimatiques, comme l’élagage ou l’utilisation dusoleil pour solariser le sol
La pluie semble faire tomber les tétranyques, c’est pourquoi un jet d’eau puissant
provenant d’un tuyau peut être utilisé pour éloigner les tétranyques et autres petits
insectes.
L’élimination ou la destruction directe des ravageurs, comme le désherbage manuel,la destruction des résidus de culture, la taille et élagage pour éliminer les parties
infectées ou les stades immatures des ravageurs (œufs, larves, etc.), le prélèvement
manuel des gros insectes
Les pièges, tels que les pièges lumineux, colorés ou collants, ou les pièges avec desappâts (phéromones, kairomones).
L’utilisation de répulsifs : substances qui désorientent les insectes nuisibles et ne leurpermettent pas de trouver facilement leur plant hôte.
Les sacs : les fruits précieux sont parfois recouverts de sacs individuels pour lesprotéger des attaques d’insectes. Cette méthode demande beaucoup de temps etde travail, mais peut donner de bons résultats
Bâches en polyester/paillis pour les lits de plantes afin d’empêcher la ponte desinsectes et de supprimer les adventices, ou des bâches en maille, filet ou en plastique
sur les plants ou les fruits pour éloigner les insectes et les oiseaux.
Brûlez les arbres infestés ou les parties des plants qui ont été gravement attaquées

Lutte culturale
Les méthodes de lutte culturale sont très semblables aux méthodes utilisées lors de laprévention. Il s’agit de méthodes qui soit évitent de favoriser des environnements propices
aux ravageurs et aux maladies, soit conduisent à des conditions préjudiciables aux
ravageurs et aux maladies. Il s’agit par exemple de l’assainissement des cultures, de la tailledes parties malades des plants ou de l’éradication de plants entiers (également une
méthode mécanique), de la manipulation des dates de plantation et de récolte pour éviter
les populations de ravageurs, etc. ou de l’introduction de structures qui font de l’agroécosystème un endroit favorable aux ennemis naturels.
Voici quelques exemples de lutte culturale :• Exploitation agricole diversifiée ou polyculture. La pratique de plusieurs cultures
dans l’exploitation agricole peut la rendre plus résistante aux attaques desravageurs• Le maintien d’une culture de couverture peut à la fois contribuer à améliorer
les conditions du sol, servir de refuge ou de source de nourriture pour lesennemis naturels et éviter l’implantation d’adventices nuisibles.
• Cultures de bordure. Plantées autour du champ.
• Cultures pièges. Il s’agit de plantes qui servent d’appât pour les ravageurs pourprotéger la culture principale. Une fois que les ravageurs sont attirés, ils
peuvent être tués.
• Paillis. Il s’agit d’une couche de matériau appliquée à la surface d’une zone
de sol. Elle peut être constituée de matériaux comme le plastique ou les filets(pour lutter contre les adventices ou pour exclure les ravageurs et réchauffer
les sols froids), ou bien il peut s’agir de paillis vivants, comme les plates-bandes
fleuries, qui contribuent à améliorer l’état des sols et à accroître la biodiversité.

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•

Une récolte efficace qui peut briser les cycles des ravageurs (éviter laréinfestation)

Lutte biologique
La lutte biologique est l’utilisation d’ennemis naturels des ravageurs pour gérer les problèmesde ravageurs. La lutte biologique peut être très sélective et les effets secondaires négatifs
sont rares. Les organismes relâchés (micro-organismes ou ennemis naturels) peuvent s’établir
dans l’exploitation agricole et, s’ils sont utilisés à temps, se reproduire à un rythme qui limite lenombre de ravageurs.
Voici quelques exemples d’ennemis naturels :• Les prédateurs, qui sont principalement des espèces telles que les mantes religieuses,
coccinelles, araignées, guêpes, insectes et libellules qui prolifèrent en milieu naturel etqui consomment un grand nombre de proies tout au long de leur vie. Les prédateurs
ne sont pas nécessairement que des insectes. Les oiseaux également sont deredoutables prédateurs qui limitent la prolifération des ravageurs tels que les chenilles
et les coléoptères.
• Parasitoïdes : insectes dont les larves se développent à l’intérieur du corps des œufsou des larves d’autres insectes qu’ils finissent par détruire. De nombreuses espèces deguêpes et de mouches sont des parasitoïdes. Certains de ces insectes parasitoïdes
sont disponibles dans le commerce.
• Les micro-organismes ou agents pathogènes comme les champignons, les bactéries
et les virus. Tout comme les humains, les insectes sont infectés par les microorganismes pathogènes. Citons par exemple Beauveria bassiana et Metarhizium
anisopliae, deux champignons qui peuvent tuer des ravageurs tels que les termites,
les thrips, les coléoptères et les pucerons. Certains de ces champignons sontdisponibles dans le commerce, mais ils peuvent aussi être présents naturellement
dans votre exploitation agricole.
Augmenter le nombre d’ennemis naturels sur l’exploitation agricole pour lutter contre lesravageurs
L’option la plus simple et la plus économique consiste à stimuler les ennemis naturels qui
vivent dans l’exploitation agricole et sont adaptés à l’environnement local. À cet effet, il
convient de préparer et de conserver les habitats (bandes fleuries, haies, plantation deplantes aromatiques). Lorsque vous préservez le sol, gérez les adventices en laissant desplantes à fleurs dans la plantation et que celle-ci est recouverte de végétation naturelle, elle
sert d’habitat aux ennemis naturels. Les sources d’eau conservées deviennent des habitats
pour les prédateurs. Les arbres indigènes plantés deviennent des habitats pour les oiseaux etles chauves-souris. Toutes ces pratiques contribuent à la PIC.
Les zones de conservation bien gérées favorisent les ennemis naturels qui empêchentl’apparition des problèmes liés aux ravageurs, de sorte que des interventions
supplémentaires telles que les applications chimiques ne sont pas nécessaires ou peuventêtre réduites.
Une autre solution consiste à acheter des ennemis naturels de la même manière que vous
achetez des pesticides. De nombreuses entreprises produisent et vendent des ennemis
naturels qui peuvent être très efficaces pour lutter contre les ravageurs. Mais elles peuvent
aussi être coûteuses et les ennemis naturels peuvent ne pas être bien adaptés aux conditions
locales parce qu’ils n’y ont pas vécu.
Il faut toujours faire preuve de prudence lors de l’introduction de nouvelles espècesd’insectes qui ne sont pas endémiques dans un pays ou une région, car elles pourraient ne
pas être en mesure de satisfaire les besoins d’une population ou celle-ci pourrait devenir
incontrôlable en l’absence de ses propres ennemis naturels et devenir à son tour unravageur. Si vous libérez artificiellement des ennemis naturels dans votre plantation, faites-letoujours sous l’assistance d’un professionnel qualifié.

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Partie II : Lorsque des niveaux seuils de ravageurs sont atteints, les producteurs peuvent fairedes applications de produits chimiques, conseillés par un technicien compétent et/ou
suivant les conseils ou l’instruction d’une organisation officielle nationale.

En quoi consistent les niveaux seuil ?
Dans de nombreux cas, l’éradication ou le contrôle total des nuisibles n’est pas nécessaire(ni même souhaitable) pour garantir la rentabilité. Presque toutes les cultures peuvent tolérer
une certaine quantité de dommages causés par les ravageurs sans affecter les rendements.
L’accent doit donc être mis sur la détermination de la relation entre le niveau de dommages
causés par un ravageur et le rendement des cultures, et sur l’établissement des niveaux dedommages ou des densités de population de ravageurs admissibles. De cette façon, un
agriculteur peut savoir si les coûts de la lutte contre le ravageur sont plus élevés que lesdommages qu’il finira par causer.
Il existe deux niveaux seuils :1. Le premier est le niveau de préjudice économique (Economic Injury Level, EIL),
qui correspond au point où la valeur de la récolte perdue sera supérieure au coûtd’une méthode de lutte. Si une méthode de lutte est utilisée sur un niveau depopulation de ravageurs inférieur à la l’EIL, le producteur perd de l’argent parceque l’intervention a coûté plus cher que le montant gagné sur la culture sauvée.
Si l’agriculteur attend que la population de ravageurs ait dépassé l’EIL, il a perdu
plus de récoltes que le coût de l’intervention. En théorie, intervenir juste avant l’EIL
maximise toujours le profit. Le producteur devra maintenir les populations deravageurs en dessous de l’EIL ou prendre des mesures avant qu’une populationde ravageurs n’atteigne l’EIL et ne cause des dommages économiques.
2. Le deuxième seuil est appelé le seuil économique (Economic Threshold, ET). Il
s’agit de la « densité de ravageurs à partir de laquelle des mesures de lutte
doivent être mises en œuvre pour l’empêcher d’atteindre le niveau de préjudiceéconomique ». Ce seuil représente toujours une densité de ravageurs ou unniveau de dommages causés par les ravageurs inférieur à l’EIL (généralement
80 % de l’EIL).
Il est important d’avoir une bonne idée des niveaux seuils des principaux ravageurs dans vos
cultures cibles, et de prévoir une action spécifique en cas de franchissement du niveau seuil.
Il est également primordial de continuer à surveiller la population des ennemis naturels.
Les institutions gouvernementales et de recherche pourraient également être en mesure defournir des conseils concernant les seuils de maladies et de ravageurs communs dans une
région particulière.
Veuillez consulter les conseils spécifiques aux cultures pour le cacaoyer, le caféier, le théieret le bananier à la fin de ce document.

Note de mise en garde :Les seuils indiqués dans ce document se fondent sur une analyse documentaire et nedoivent être utilisés qu’à titre indicatif. Les stratégies de PIC doivent tenir compte desparamètres contextuels et de l’expérience locale.
Partie III : Lorsque des produits chimiques sont utilisés :•Les produits chimiques possédant la plus basse toxicité et la plus haute sélectivité
sont utilisés

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•••Les applications sont faites uniquement sur les plants et zones impactés
Les ingrédients actifs sont alternés pour éviter et réduire la résistance
Les pulvérisations programmées dans un calendrier sont évitées et ne sontpermises que lorsqu’elles sont recommandées par un technicien compétent ou
une organisation officielle nationale.

Utilisation de produits agrochimiques
De nombreux programmes dits PIC sont fondés en grande partie sur l’utilisation de pesticides
synthétiques (« destructeurs de ravageurs », c’est-à-dire insecticides, fongicides, nématicides,
herbicides, rodenticides), mais cela n’est pas conforme au principe de la PIC.
Cette approche populaire, qui consiste à combattre les ravageurs et les maladies enappliquant des pesticides de façon préventive, n’est pas un programme de protection
intégrée des cultures et engendre des incidents tels que des problèmes secondaires deravageurs, des ravageurs résistants et une augmentation de nouveaux ravageurs en raisonde la mort des ennemis naturels. L’utilisation inconsidérée de pesticides, outre son action
préjudiciable sur la santé humaine et sur l’environnement, porte toujours atteinte aux
populations d’ennemis naturels qui contribuent à la lutte contre les ravageurs et conduit àdes cycles vicieux d’infestations de ravageurs toujours plus nombreuses.
La lutte chimique ne doit être utilisée qu’après avoir appliqué les méthodes culturale,mécanique et/ou biologique et que les nuisibles atteignent encore des niveaux seuils.
En cas d’utilisation de pesticides chimiques, la norme Rainforest Alliance exige que :1. Le pesticide soit enregistré pour être utilisé dans votre pays.
2. La priorité soit donnée aux pesticides dont la toxicité est la plus faible possible. À cet
effet, suivez toujours l’étiquette du pesticide et la FDS (fiche de données de sécurité).
Les conteneurs de pesticides sont munis d’étiquettes d’avertissement qui indiquent leniveau de toxicité à l’aide d’un code couleur (voir ci-dessous6). Ces informations sontbasées sur les exigences de l’Organisation mondiale de la santé (OMS). L’OMS classe
les pesticides par danger en fonction de leur dose létale orale et cutanée (DL50),
c’est-à-dire la quantité de pesticide qui tuerait une personne si elle l’absorbait par labouche ou la peau. Chaque insecticide est ensuite classé dans l’une des quatreclasses :1a, extrêmement dangereux
1b, très dangereux
II, modérément dangereux
III, légèrement dangereux
Vous devez vous assurer que les personnes qui manipulent des pesticides lisent,
comprennent et respectent également les informations et les instructions figurant surl’étiquette et la FDS d’un produit. Si une FDS n’est pas disponible dans votre pays,
vous pouvez contacter votre agence gouvernementale locale, le fournisseur depesticides ou le fabricant pour obtenir ces informations. Il vous incombe de mettre
ces informations à la disposition de toutes les personnes concernées par la
manipulation des pesticides dans votre groupe ou dans votre exploitation agricole.

6 http://www.fao.org/3/a-i4854e.pdf

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Figure 2. Code couleur indiquant le niveau de toxicité d’un pesticide. Source : OMS. 2010. Classification OMS
recommandée des pesticides en fonction des dangers qu’ils présentent et lignes directrices pour la classification
2019. Organisation mondiale de la santé, Genève [Disponible sur :http://www.who.int/ipcs/publications/pesticides_hazard/en/index.html]

3. La lutte chimique doit être pratiquée par le biais d’applications sélectives/par zone7,
c’est-à-dire uniquement là où c’est nécessaire (zones à forte concentration deravageurs) et non sur l’ensemble de la parcelle ou de l’exploitation agricole. Si lespesticides sont appliqués dans des zones où les ravageurs ne sont pas présents, ils
tueront également les organismes bénéfiques.
3.
4. Les ingrédients actifs sont alternés pour éviter et réduire la résistance. Tous lespesticides ont un « mode d’action », qui fait référence à la manière dont ils
perturbent activement les populations de ravageurs sur leur site cible. Si despesticides ayant le même mode d’action sont appliqués de manière continue etrépétitive, les parasites développeront une résistance. Ce qui signifie qu’à unmoment donné, ils ne seront plus tués par le pesticide. Pour éviter cela, il faut toujours
alterner les pesticides avec des modes d’action différents. Vous trouverez desinformations sur la rotation des modes d’action sur le site Internet de l’IRAC :https://irac-online.org/modes-of-action/. Vous pouvez également télécharger leurapplication ici https://play.google.com/store/apps/details?id=irac.moa&hl=en. Cette
application est une base de données consultable facile à utiliser qui vous permetd’identifier les ingrédients actifs des insecticides et leurs groupes de mode d’action
respectifs, afin que vous sachiez comment les alterner.
5. Les pesticides synthétiques ne doivent pas être appliqués en fonction d’un calendrier
fixe, de la phénologie des cultures ou d’un calendrier d’application. Leur pulvérisationn’est permise que lorsqu’elle est recommandée par un technicien compétent ou uneorganisation officielle nationale..

En outre, gardez à l’esprit que...
•••

Chaque pays a sa propre réglementation en matière de pesticides. Les produits
enregistrés et approuvés varient d’un pays à l’autre. C’est pourquoi il est importantde vérifier votre législation nationale.
S’il existe une différence entre ce qui est autorisé dans votre pays et ce qui se trouve
sur la liste de Rainforest Alliance, la norme la plus stricte prévaudra. Cela signifie queles pesticides autorisés et enregistrés dans votre pays ne peuvent pas être utilisés s’ils
figurent sur la liste des pesticides interdits de Rainforest Alliance et vice versa.
La liste des pesticides interdits de Rainforest Alliance (Annexe 7 de la norme pourl’agriculture durable 2020) comprend les noms des ingrédients actifs et non le nom
commercial du pesticide. En effet, les pesticides sont enregistrés sous des noms
commerciaux différents selon les pays, mais l’ingrédient actif porte le même nom
dans le monde entier.

7 Les applications sélectives ne sont pas possibles pour les infestations généralisées de nématodes.

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•

Si des substances figurant sur la liste d’atténuation des risques de Rainforest Alliance(Annexe 7 de la norme pour l’agriculture durable 2020) sont utilisées, elles le sont dansle cadre de la mise en œuvre de la stratégie de PIC et les mesures correspondantessont prises pour minimiser les risques.

EXIGENCE PRINCIPALE 4.5.4
Les producteurs et les travailleurs qui sont impliqués dans les activités de gestion desravageurs sont formés sur la stratégie de PIC.

Objectif
Toutes les personnes impliquées dans la production agricole comprennent le concept et les
principes de la PIC, et sont capables de mener leurs activités correctement.

Applicabilité
Cette exigence fondamentale est applicable à tous. Cela concerne les petites exploitations,les grandes exploitations et la direction du groupe dans le cadre de la certification degroupe, ainsi que les titulaires de certificat individuel.

Mise en œuvre
La formation et les connaissances sur la PIC contribueront à la mise en œuvre d’unprogramme de qualité. Vous devrez vous assurer que :• Les producteurs sont conscients des ravageurs courants sur l’exploitation agricole etdes méthodes possibles pour réduire leurs populations, et qu’ils savent où trouver desinformations sur les ravageurs et les mesures de lutte• La personne responsable de l’élaboration et du suivi de la stratégie de PIC possède
les connaissances et les compétences requises• La formation est dispensée régulièrement et les dossiers de formation sont tenus à jour
• La formation est de bonne qualité, aborde les problèmes réels de ravageurs
rencontrés dans les exploitations agricoles, comprend des exemples pratiques et est
dispensée par une personne qualifiée
Des Champs-Écoles des Producteurs (CEP) peuvent être mises en place pour soutenir vos
membres. Il a été démontré qu’il s’agit d’un moyen efficace d’adopter la PIC. Les parcellesde démonstration sont utiles pour montrer les expériences réussies en matière de lutte contre
les ravageurs.

AMELIORATION OBLIGATOIRE 4.5.5 (L1)Tous les producteurs ont mis en œuvre la stratégie de PIC.

Objectif
Les petits agriculteurs mettent en œuvre la stratégie de PIC élaborée par la direction dugroupe et les niveaux de ravageurs sont maintenus sous contrôle.

Applicabilité
Cette exigence fondamentale est applicable à toutes les petites exploitations agricoles.

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Mise en œuvre
La liste de tâches suivante contient une série d’informations à collecter au niveau del’exploitation agricole pour déterminer si la stratégie de PIC est mise en œuvre etfonctionne :Liste des tâches

Oui/NonEn attente.
Pourquoi ?

Prévenir le problème ou le ravageur et ses ennemis naturels
Tous les éléments de prévention applicables à
l’exploitation agricoles sont mis en œuvre
Le sol est en bonne santé
Le matériel végétal est tolérant aux ravageurs del’exploitation agricole et est en bonne santéles producteurs mettent en œuvre toutes les bonnes
pratiques agricoles recommandées pour les cultures
l’exploitation agricole est diversifiée et comporte desparcelles de végétation naturelle, des jardins fleuris, deszones ripariennes, etc. qui servent de refuge et de source
de nourriture aux ennemis naturels

Identifier le problème ou le ravageur et ses ennemis naturels
les producteurs ont une très bonne connaissance desprincipaux ravageurs de la culture, des dommages qu’ils
causent et de leurs cycles et stades de développement
les producteurs ont une bonne connaissance desprincipaux ennemis naturels des principaux ravageursprésents sur l’exploitation agricole et savent comment en
prendre soin et les stimuler

Déterminer la gravité du problème
les producteurs connaissent les seuils des principaux
ravageurs de la culture. Ils connaissent le seuil detolérance aux dommages et quand agir
Les producteurs surveillent et enregistrent (au moins toutes
les deux semaines) le nombre de ravageurs et d’ennemis
naturels par site et savent exactement quand ils doivent
mettre en œuvre des mesures de lutte

Évaluer les options de gestion (ne rien faire, lutte physique, culturale, biologique,chimique ?)les producteurs ont une idée claire du type de mesures
non chimiques qu’ils peuvent mettre en œuvre dansl’exploitation agricole et où les mettre en œuvre. Ils savent
quel type de mesure de lutte culturale et physiquefonctionnera
les producteurs savent quels sont les avantages, lesinconvénients et les coûts de chaque méthodeles producteurs savent si l’utilisation de pièges est possible

Mesurer l’efficacité des options employées. Enregistrer les résultats
les producteurs ont enregistré les résultats de l’utilisation deméthodes non chimiques et savent si elles sont efficaces
ou nonles producteurs savent clairement quand ils doivent
appliquer un pesticide et comment choisir la toxicité laplus faible possible
Si les producteurs doivent appliquer un pesticide, ils fontd’abord des applications sélectives (non applicable à lalutte contre les nématodes)
les producteurs connaissent les différents modes d’action
des pesticides et savent comment les alterner

Gardez à l’esprit que...
Pour une mise en œuvre réussie des stratégies de PIC, la direction du groupe aide ses
membres à s’assurer que la liste d’activités ci-dessus a été mise en œuvre.

21
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22
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AMELIORATION OBLIGATOIRE 4.5.6 (L2)
Les producteurs améliorent les écosystèmes naturels à proximité des zones de cultures pouraugmenter les habitats des ennemis/auxiliaires naturels. Par exemple : insectariums,
plantation d’arbres et d’arbustes attirant les oiseaux/chauves-souris/pollinisateurs, conversion
des zones de basse altitude en petits étangs avec de la végétation, amélioration des zones
ripariennes et de leur végétation

Objectif
Avoir une exploitation agricole qui préserve la biodiversité et qui dispose de suffisamment
d’endroits où les ennemis naturels des ravageurs peuvent vivre, se nourrir et prospérer. Les
ennemis naturels permettent de garder les niveaux de ravageurs sous contrôle

Applicabilité
Cette exigence fondamentale est applicable à tous. Cela concerne les petites exploitations,les grandes exploitations et la direction du groupe dans le cadre de la certification degroupe, ainsi que les titulaires de certificat individuel.

GENERALITES
Les monocultures à grande échelle, et les monocultures en général, offrent peu de place etde nourriture aux organismes bénéfiques. Dans un tel environnement, les organismes nuisibles
peuvent se multiplier rapidement en raison de l’absence d’ennemis naturels.
La diversité des ennemis naturels est directement liée à la diversité végétale, car ils
dépendent d’une grande variété de plantes sauvages. De nombreux ennemis naturels
dépendent des plantes à fleurs pour leur approvisionnement en nectar et en pollen, ou ont
besoin de haies pour se protéger et se reproduire. Pour avoir un environnement sain où lesennemis naturels des ravageurs peuvent prospérer et où la prévention est la composante laplus importante de la lutte contre les ravageurs, il est crucial d’améliorer et de préserver les
habitats naturels de l’exploitation agricole. Il s’agit notamment des zones de végétation
naturelle, des cultures de couverture, des zones de plantes à fleurs indigènes, des arbres
indigènes et de la végétation autour des petits étangs et des petites rivières.
Voici quelques exemples :23
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COMPTEUR INTELLIGENT OBLIGATOIRE 4.5.7
Les producteurs assurent le suivi et réduisent l’utilisation des pesticides.

Indicateur
Ingrédients actifs par ha (kg/ha, par an ou par cycle de culture)
Ingrédients actifs utilisés mentionnés dans la Liste d’utilisation exceptionnelle et la Listed’atténuation des risques
Dans les groupes de petites exploitations agricoles, l’indicateur peut être suivi sur unéchantillon représentatif des exploitations agricoles

Objectif
Suivre et disposer de données précises sur l’utilisation des pesticides afin de pouvoir réduireleur utilisation au fil du temps.

Applicabilité
Cette exigence fondamentale est applicable à tous. Cela concerne les petites exploitations
agricoles, les grandes exploitations agricoles et la direction du groupe des petites
exploitations, les grandes exploitations et la direction du groupe dans le cadre de lacertification de groupe, et les titulaires de certificat individuels.

Mise en œuvre
Les producteurs doivent disposer de données précises et définir des objectifs de réduction
réalisables. La direction du groupe est chargée de contrôler ces données pour unéchantillon représentatif de petites exploitations agricoles.
Pour le premier indicateur : Ingrédients actifs par ha (kg/ha, par an ou par cycle de culture).
Les producteurs doivent savoir quels produits sont appliqués et en quelles quantités. Cette
information doit figurer non pas en tant que nom commercial, mais en tant qu’ingrédientactif. La quantité doit être indiquée en grammes ou en kilogrammes de matière active paran ou par cycle de culture.
Pour calculer les ingrédients actifs par ha (kg/ha, par an ou par cycle de culture), d’un
produit donné, les producteurs ont besoin des informations suivantes :• Matière active dans un produit donné en g ou en kg (figurant sur l’étiquette sous
forme de pourcentage)• Quantité de produit appliqué par an ou par cycle de culture (total)• Nombre d’hectares où le produit est appliqué24
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Par exemple, vous avez appliqué 8 litres d’un produit sur 4 hectares au cours de l’année.
L’étiquette du produit indique qu’il contient 36 % d’ingrédient actif. Autrement dit, pourchaque litre ou kilo de produit, il y a 360 grammes ou ml d’ingrédient actif. Soit 360 fois 8 litres
appliqués = 2 880 grammes (ou 2,88 kg) de matière active sur 4 hectares par an.
Pour le deuxième indicateur : Les ingrédients actifs utilisés qui figurent dans la listed’utilisation exceptionnelle et la liste d’atténuation des risques. Les producteurs doiventénumérer les pesticides de la liste d’atténuation des risques (Annexe 7 de la norme pourl’agriculture durable) ou les pesticides de la politique d’utilisation exceptionnelle qui sontutilisés.

LUTTE INTEGREE CONTRE LES ADVENTICESVous trouverez ici des informations générales sur la lutte intégrée contre les adventices :Plant Production and Protection Division: What is Integrated Weed Management (fao.org)
Un bon plan de lutte contre les adventices comprend les actions suivantes :1. Prévenir l’établissement des adventices en utilisant les interventions suivantes, le caséchéant :• Connaissez vos principales adventices. La période de leur floraison et de leursemis
• Gestion des marges sur le terrain• Graines propres• Utilisation de cultures de couverture• Paillage (mort ou vivant)• Composés allélopathiques• Cultures de couverture• Période et profondeur de la culture
2. Réduisez l’impact des adventices sur les cultures grâce :• Au choix de la variété de la plante• À la disposition spatiale des cultures• Au désherbage mécanique ou manuel• Aux cultures intercalaires• À la lutte biologique (ravageurs qui s’attaquent à l’adventice)
3. Réduisez le rendement des semences en :• Nettoyant les machines• Gérant l’eau et les engrais• Collectant et en détruisant des graines d’adventices• Appliquant des herbicides de post-levée en post-levée et sélectivement endernier recours• Luttant contre les adventices manuellement

25
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CONSEILS SPECIFIQUES AU CAFEIER
Clause de non-responsabilité
Ce document d’orientation sur la PIC spécifique aux cultures n’entend pas couvrir tous lesravageurs par culture. L’objectif est de présenter les ravageurs/maladies les plus courants qui
affectent certaines cultures dans plusieurs régions du monde.

Introduction
Il est important de comprendre que le caféier n’est qu’un élément de l’écosystème complet
du café. Chaque partie de l’écosystème joue son rôle et d’autres éléments doivent doncêtre pris en compte.

Informations générales
Recommandations sur le caféier (arabica et robusta)
Choix d’un site adéquat
pour la culture

Conditionsdecroissancepour
Arabica

Conditionsdecroissancepour
Robusta

Altitudetempérature
Précipitations
Pente
Altitudetempérature
Précipitations

Pente
Choix de variétés decultures saines adaptées
au siteMaintien de la fertilité etde la santé des sols

Régions subtropicales et équatoriales situées à des altitudes
plus élevées, qui fournissent des précipitations suffisantes etdes températures modérées. Le caféier Robusta est mieux
adapté aux températures plus élevées que l’Arabica. Les
conditions d’ombrage qui imitent les conditions originales
de la forêt de caféiers et qui fournissent suffisammentd’ombre pendant les moments les plus chauds de lajournée sans produire un microclimat trop humide sontidéales pour un café de haute qualité.
Supérieure à 1000 mètres au-dessus du niveau de la mer(m.a.s.l.) jusqu’à 2500 m.a.s.l. (limite de gel) en fonction dela latitude
température journalière optimale : 15° - 25°C.
> 1000 jusqu’à 1500 mm par an, distribuées uniformément
durant 7 mois de l’année, avec ensuite une période sèchede stress pour induire une floraison uniforme
Supérieure à 15 %200 m.a.s.l. - 1000 m.a.s.l.
20º à 30 °C
1000 à 3000 mm par an, distribuées durant 9 mois del’année, avec une saison de croissance du caféier humide
bien définie et une saison de maturation sèche et chaude.
Pente minimale > 7 % de pente
La préférence doit être donnée aux variétés résistantes
lorsque cela est possible. Le Bourbon Pointu/Laurina, parexemple, est connu pour être très sensible à la rouille desfeuilles
Les plants affaiblis produisent non seulement une mauvaise
récolte, mais sont également plus sensibles aux attaquesdes ravageurs et des maladies. Dans l’idéal, les sols sonttestés une fois par an avant la floraison et le type et laquantité recommandés d’intrant sont appliqués.
Pour chaque tonne de grains de café vert récoltés sur lesplants, environ 40 kg de N, 2,2 kg de P et 53 kg de K doiventêtre annuellement remplacés8. Des applications de fumierorganique avec des applications d’engrais inorganiquesaugmentent le taux d’assimilation des nutriments. Plage depH (H20) recommandée : 5.5 - 6.0, si l’acidité du sol est
inférieure à cette plage, l’application de calcium est

8 Les taux de fertilisation doivent être calculés en prenant en compte le type de sol, les niveaux de MOS, les niveaux en nutriments du sol et les taux moyens

de perte. Estimation moyenne des pertes : N = 30-70 % (plus élevé à des températures plus élevées, et si exposé à O2 et H2O), P = 50-100 % (plus élevé à pH
faible et pour des niveaux élevés de Fe ou d’Al dans le sol), K = 30 %, Ca = 10 %, Mg, Cu, Fe, Zn, B = 25 %26
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Maintien de niveauxadéquats de matièreorganique du sol (MOS)

Maintien de conditions
microclimatiques
adéquates dans laplantation

Maintien de niveauxd’ombrage adéquats

recommandée pour faciliter l’absorption de P et d’autres
nutriments.
(Pour plus de détails, veuillez vous reporter au documentd’orientation sur les sols).
Un taux de MOS adéquat de 1 à 3 % est nécessaire pourmaintenir les niveaux de micro-organismes bénéfiques,assurer un bon drainage (le caféier est sensible à lasaturation en eau), ainsi que des niveaux de rétention d’eau
adéquats. Pour augmenter et maintenir des niveauxadéquats de MOS, des ajouts fréquents de fumier animal ou
de compost sont nécessaires, ainsi que le paillage ou
l’utilisation de cultures de couverture avec des matériaux
appropriés (par exemple, des cultures légumineuses oumême une adventice comme Paspalum conjugatum)
La création d’un microclimat dans la plantation qui soit
favorable à la variété de caféier cultivée et défavorable
aux ravageurs et aux maladies peut être un facteur deprévention essentiel ou du moins réduire la gravité d’uneépidémie. Ceci est particulièrement important pendant lessaisons exceptionnellement sèches et chaudes, qui peuvent
se produire plus fréquemment en raison du changement
climatique dans certaines régions. Pour y parvenir, il
convient de mettre en place des niveaux d’ombrageadéquats, mais aussi une couverture du sol sous forme depaillis ou de cultures de couverture (cultures mixtes). Le
paillis reste à distance de la base du plant pour réduire lerisque de maladie. Le paillis est replacé à la fin de chaquesaison pluvieuse. Les insectes bénéfiques, tels que lesabeilles et les ennemis naturels, peuvent être attirés dans lazone en permettant à des zones de plantes à fleursindigènes de pousser dans la plantation, créant ainsi unécosystème plus diversifié et plus résilient qui leur sertd’habitat pour proliférer.
Pour la même raison, le désherbage sélectif est encouragé.
Le désherbage sélectif consiste à éliminer les adventices lesplus envahissantes, en conservant si possible leslégumineuses à croissance lente et à petites racines, ce qui,au final, donnera l’impression d’un tapis vert sur
l’exploitation agricole et conservera l’humidité du sol tout
en empêchant d’autres adventices de pousser, réduisantainsi le besoin d’herbicides.
Des niveaux d’ombrage de 15 à 50 % sont recommandés,en fonction de la zone de vie. L’ombre protège les jeunes
plants de caféier du stress de la sécheresse et de lasurexposition au soleil, qui provoque le jaunissement et lamort des feuilles, le surnombre de fruits dans l’arbre et/ou ledépérissement des arbres plus âgés. Cependant, tropd’ombre peut réduire la floraison et créer un microclimat
trop humide, ce qui peut favoriser les maladies fongiques.
Par conséquent, le niveau d’ombrage doit être géré deprès en fonction des conditions climatiques locales ainsi quede la pression exercée par les ravageurs et les maladies.
Les légumineuses comme Erythrina subumbrans, Gliricidia
sepium, Cassia siamea, ou Albizia polycephala, Albizia
coriaria peuvent également contribuer à la fertilité du sol 9.
L’espacement suggéré pour les petits arbres à feuilles

9 La disponibilité et l’adéquation des espèces d’arbres doivent être vérifiées auprès des techniciens ou des centres de recherche locaux compétents.

27
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Tailler, élaguer etdébourgeonner de façon
adéquate et ponctuelle

caduques comme Erythrina, Gliricidia et Cassia est de 5 x
5 m (400 arbres/ha), tandis que celui des arbres à boisd’œuvre plus grands est de 10 x 10 m ou plus selon la taillede la canopée (max. 100 arbres/ha) plantés dans lesrangées de caféiers. Les branches inférieures doivent êtrerégulièrement supprimées.
Le matériel végétal malade ne doit pas rester dans laplantation, car il sert de nourriture et de lieu de reproduction
aux ravageurs et aux maladies. Les blessures causées parune taille et un élagage inadéquat ou des branches
cassées sont vulnérables aux infections fongiques.

L’application mobile gratuite « HabitApp » permet d’obtenir une lecture instantanée ducouvert d’ombrage sur le caféier. Elle peut être téléchargée via le lien suivant : HabitApp —Apps sur Google Play28
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RAVAGEURS COURANTS DU CAFEIER
Légende :Type de ravageur

Stades de vie du ravageur qui cause des dommages
les stades de vie du ravageur qui ne causent PAS de dommagesŒuf

Durée (dépend des espèces et des conditions
environnementales)< semaineLarve

2 à 3 semaines

à l’intérieur de la graine/de la baie/du grain

Pupe

4 à 9 jours

AdulteDe quelques jours à 5 mois

à l’intérieur de la chambre d’alimentation
se déplace pour trouver des graines, desbaies ou des grains

Étape

Capucins etcharançons desgrains(Infos générales)

Scolyte du fruit du caféier (Hypotenemus
hampei)Habitats’insère dans la graine/les baies/les grains

Les larves du SFC à l’intérieur de la baie
Baies endommagées par le SFC

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Le scolyte du fruit du caféier (SFC) (Hypothenemus hampei)• Le ravageur le plus dangereux pour le caféier. Minuscule coléoptère brun noir (1,5 à 2,5 mm de long), cylindrique. Les femelles sortent desbaies infestées laissées sur les arbres et sur le sol et creusent des tunnels et des chambres dans les baies d’environ 90-100 jours pour y pondre
leurs œufs. Après l’éclosion, les larves (vers blancs) se nourrissent à l’intérieur des grains, les rendant impropres à la consommation. La
nymphose et le développement des adultes ont lieu dans la baie. Il y a 10 femelles pour chaque mâle.
• Symptômes : Un ou plusieurs petits trous ronds près de l’apex des baies avec de la sciure brune au-dessus des trous. Les baies présentent une
coloration bleue verte distincte. Une fois ouverte, la graine révèle la femelle ou les œufs, les larves, les pupes et les nouveaux jeunes adultes.
• Dégâts : Pertes de récoltes de 50 à 100 % des baies attaquées si aucune mesure de lutte n’est appliquée. Si le lot n’est pas séché
correctement, le SFC continuera à se reproduire dans la récolte stockée. Les dégâts causés par le scolyte du fruit du caféier favorisentégalement une infection fongique secondaire.
• Favorisé par une altitude trop basse (températures élevées), des plantations abandonnées/infestées à proximité, ainsi que des baies tropmûres laissées sur l’arbre ou sur le sol.
• Le SFC survit entre les périodes de culture dans les vieilles baies sèches qui restent sur l’arbre et le sol.
• Prévention : Réduire l’ombre si le microclimat est trop humide. Taillez correctement et en temps voulu. Un ombrage important et/ou un caféier
mal taillé créent des conditions défavorables pour les ennemis naturels du SFC.
• Lutte comportementale : À partir de 8 semaines après la floraison, utilisez les pièges rouges multi-funnel appâtés avec un mélange 1 : 1d’éthanol et de méthanol à 0,5 dose ou des pièges commerciaux BROCAP10 pour attirer les femelles mobiles avant qu’elles ne percent lesbaies.
• Lutte mécanique : Assainissement. Retirez les baies infestées.
• Récoltez et ramassez toutes les baies de café sur les arbres ainsi que les baies tombées au sol ; ramassez les baies tous les quinze jours dans leszones infestées.
• Lutte biologique : Parasitoïdes comme Cephalonomia stephanoderis, C. hyalinipennis, Prorops nasuta ou Phymastichus coffea ; champignon
Beauveria bassiana en utilisant une dose de 1010 à1012 spores par caféier (particulièrement efficace en conditions humides).
• Lutte chimique : Les produits à base de neem pulvérisés au début du développement des baies peuvent être appliqués pour repousser lesscolytes femelles. Une fois que la femelle a pénétré dans la baie, la lutte chimique est inefficace.
• De même, Millettia pinnata, seul ou en combinaison avec Neem, fonctionne bien pour lutter contre les ravageurs• Niveau seuil : Prélevez un échantillon mensuel à partir de huit semaines après la floraison jusqu’à la récolte (>32 semaines). Sélectionnez
aléatoirement 30 arbres tous les 5000 arbres. Sélectionnez une branche au milieu d’un arbre, contenant 30 à 100 baies vertes et examinez-lestoutes à la recherche de trous de scolytes. Calculez le pourcentage d’infestation (100/(total des baies vertes/baies infestées) = %d’infestation). Une autre méthode d’échantillonnage consiste à utiliser le piège Brocap• Commencez l’intervention (comme l’assainissement des cultures) lorsque le taux d’infestation est > 2-5 %.

10 https://www.cirad.fr/en/innovation-expertise/products-and-services/brocap-r near processing and coffee washing areas.

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Œufs

Durée (dépend des espèces etdes conditions
environnementales)
7 jours

Nymphe3 semaines

Adulte< 30 jours

Étape

Thrips(Infos générales)

HabitatS’insère dans le tissu végétal
Avant de se transformer en adultes, les nymphes se cachent dans le solsans se nourrir
Dessous des feuilles

Thrips du café (Diarthrothrips coffeae)
Insectes minuscules (1,5 mm) et minces, qui grattent et sucent les tissus des feuilles, etqui, en cas de forte infestation, s’attaquent également aux baies. Les nymphes
passent le dernier stade avant la maturation dans le sol autour de l’arbre.
••••

Les thrips du café (Diarthrothrips coffeae) sur la face inférieure d’une feuille

•
•

•
•

•

Symptômes : Les feuilles affectées présentent des taches jaunes et blanches.
Les feuilles peuvent se flétrir et mourir.
Dégâts : Une forte infestation peut entraîner la mort des feuilles ou leur chutetotale.
Favorisé par la sécheresse et les températures élevées. Utilisation répétée de
Carbaryl ou d’autres insecticides qui tuent les acariens prédateurs.
Prévention : Maintenez une couverture d’arbres d’ombrage adéquate. Le
paillage réduit considérablement les thrips, surtout pendant la saison sèche.
Enlevez les feuilles infestées.
Lutte mécanique : utilisation de pièges collants
Lutte biologique : Les acariens prédateurs qui se reproduisent dans les zones
de végétation naturelle sont de bons ennemis naturels. Des acariens
prédateurs sont également disponibles dans le commerce. Ils doivent êtreintroduits au début de la saison de culture et relâchés plusieurs fois au coursde la saison. Les espèces de punaises minuscules sont également très
efficaces pour lutter contre les thrips.
Lutte chimique : Une huile horticole ou une solution huile-savon peut êtrepulvérisée pour étouffer le ravageur.
Utilisation de pesticides synthétiques approuvés localement uniquement endernier recours. Avant de procéder à l’application d’insecticides, consultez
toujours la liste des insecticides interdits et la liste d’atténuation des risques del’Annexe 7 de la norme 2020 de Rainforest Alliance.
Niveau seuil : 1-2 par feuille pendant la sécheresse et 2-3 pendant les pluies.
Libération d’acariens prédateurs ou autres méthodes de lutte

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Œuf

Durée (dépend des espèces et desconditions environnementales)1 à 3 semainesLarve

3 à 4 semaines

Pupe

1 à 2 semaines

Adulte< 1 mois

Étape

Papillons de nuit etpapillons de jour
(Infos générales)

Dégâts causés par la pyrale du café Prophantis
smaragdina

HabitatÀ la surface ou s’insère dans le plant hôte
Se nourrit sur ou dans les tissus du plant hôte
Suspendus au plant hôte ou enroulés dans une feuille. Certaines senymphosent dans le sol.
Ailes mobiles

Mineuse du café (Leucoptera coffeella)

Dégâts causés par la mineuse du café
(Leucoptera coffeella)

Cocon de la mineuse du café

Mineuse du café (Leucoptera spp.)Pyrale du café (Prophantis smaragdina)
•
•
•
•
•
•
•

Symptômes : Les mines des chenilles de Leucoptera meyricki sont initialement séparées pour ne former plus qu’une seule grande mine à la fin.
Les chenilles de L. coffeella produisent une mine commune, qui apparaît sous forme de taches brunes irrégulières sur la face supérieure desfeuilles.
Dégâts : L’activité minière entraîne une réduction de la surface active des feuilles, ce qui réduit l’assimilation. Les feuilles attaquées tombent
généralement prématurément.
Favorisés par un temps plus chaud et plus sec.
Prévention : La culture intercalaire avec Artemisia sp réduit considérablement l’incidence de la mineuse du café. Les premières feuilles
infestées peuvent être enlevées et détruites manuellement. Prévoyez suffisamment d’espace pour les populations d’insectes utiles sous laforme de plantes à fleurs indigènes et de couches épaisses de paillis.
Lutte biologique : Les guêpes parasites, présentes naturellement dans les champs, s’attaquent aux larves. Les acariens prédateurs senourrissent des œufs de la mineuse. Les champignons entomopathogènes peuvent également lutter contre le ravageur.
Lutte chimique : La lutte chimique est difficile, car les chenilles qui causent des dégâts sont protégées à l’intérieur des feuilles, ce qui ne faitqu’endommager les populations d’insectes utiles. Elle n’est donc pas recommandée.
Utilisation de pesticides synthétiques approuvés localement uniquement en dernier recours. Avant de procéder à l’application d’insecticides,
consultez toujours la liste des insecticides interdits et la liste d’atténuation des risques de l’Annexe 7 de la norme 2020 de Rainforest Alliance.

33
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••

Niveau seuil : Si l’arbre est secoué vigoureusement et que l’on voit plus de 35 papillons, le rendement du caféier peut être affecté.
Une densité de 4 mines par feuille provoque la chute des feuilles et peut entraîner une perte de rendement de 50 %.
Durée (dépend des espèces et des
Étape
Habitatconditions environnementales)
Kyste
NématodesŒuf(Infos générales)
Dans le sol près des racines, ou à l’intérieur du cortex des racines,
Plusieurs semaines
généralement hôte spécifique
Jeune
AdulteDégâts causés par le nématode à galles sur lesystème racinaire du caféier

Nématodes à galles (Meloidogyne spp., Pratylenchus coffeae, Radopholus similis, Rotylenchus spp.)
Attaque les racines, perturbant la fonction du système racinaire.
• Symptômes : Plants rabougris, à faible croissance avec des feuilles jaunies et tombantes. Les
systèmes racinaires infectés présentent des nœuds caractéristiques.
• Dégâts : Réduit la capacité du caféier à absorber l’eau et les nutriments, ce qui entraîne undéclin de la santé générale et de la vigueur de l’arbre et a également un impact sur lerendement et la qualité des grains.
• Le rendement peut être réduit de 20 à 25 %. Les plants peuvent finir par succomber à une
infestation de nématodes.
• Peut provoquer des infections fongiques secondaires, telles que Rhizoctonia solani.
• Causés par le transport de matériel végétal malade entre les exploitations agricoles, ou par l’eau
en aval.
• Prévention : Veiller à utiliser du matériel végétal exempt de nématodes ou de porte-greffesrésistants ou tolérants. Le sol utilisé en pépinière pour les semis peut être chauffé, traité au calcium
ou aux cendres, ou mélangé à des champignons entomopathogènes comme Beauveria
bassiana, Metarhizium anisopliae ou Paecilomyces sp stérilisés avant la plantation.
• La culture mixte avec l’arachide ou le maïs, qui sont tous deux des hôtes pauvres ou non hôtes de
M. incognita, a été utilisée pour gérer ce nématode.
• Une fertilité du sol et une matière organique adéquates peuvent aider les arbres à surmonter
partiellement les effets de l’attaque des nématodes et ainsi contribuer à minimiser l’impact sur lerendement.
• Lutte chimique : elle est extrêmement coûteuse et n’est pas économiquement efficace si degrandes surfaces doivent être traitées. Le meilleur traitement est celui de la pépinière. Utilisation depesticides synthétiques approuvés localement uniquement en dernier recours. Avant de procéderà l’application d’insecticides, consultez toujours la liste des insecticides interdits et la listed’atténuation des risques de l’Annexe 7 de la norme 2020 de Rainforest Alliance.
• Niveau seuil : de 100 à 5000 nématodes par kg de

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•sol en fonction des genres de nématodes, et à déterminer par une analyse du sol.

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ÉtapeCochenilles(Infosgénérales)ŒufsNympheAdulteDurée (dépend des espèces etdes conditions
environnementales)< 1 mois

Habitat< 2 mois♀ meurt après la ponte desœufs

Larves mobiles
Immobile ♀ le long de la nervure médiane des feuilles, rameaux, branches,
tiges. ♂ mobile avec des ailes.

Cochenille verte du caféier (Coccus viridis) le long desveines des feuilles

Protégé par la cochenille femelle

Cochenille verte du caféier sur les baies vertes

Cochenille verte du caféier : adultes et nymphes sur dejeunes tiges et des bourgeons

Cochenille verte du caféier (Coccus viridis) commune, selon l’endroit, ravageur mineur à grave. Plus grave sur les semis repiqués pendant les
2 premières années. Immobile et généralement installée sur la face inférieure de la feuille, près de la veine centrale ou près de l’extrémité despousses vertes. Cochenilles plates et ovales (environ 3 x 2 mm). Elles sont souvent entretenues et propagées par les fourmis. Leur miellat exsudé
favorise le développement de la fumagine.
•
•
•

•
•

Dégâts : la succion entraîne une baisse de rendement et des grains de café de mauvaise qualité. Une alimentation excessive provoque leflétrissement et peut entraîner la mort de l’arbre.
Favorisées par une faible humidité et des saisons sèches longues et chaudes et trop peu d’ombre.
Prévention : N’utilisez que des semis sans cochenilles pour la plantation. Améliorez l’ombrage pour créer un microclimat plus humide. Luttez
contre les fourmis, par exemple en plaçant des bandes collantes autour des tiges. L’absence de fourmis favorise la lutte par des ennemis
naturels. La plantation de citrouilles comme culture de couverture encourage les populations d’insectes bénéfiques. Évitez les hôtes alternatifs
de la cochenille.
Lutte biologique : prédateurs (Chilocorus melanophthalmus, Chilocorus nigrita) , Azya luteipes, Chilocorus cacti) ; guêpes parasites(Coccophagus cowperi, Diversinervus stramineus, Metaphycus stanleyi, Metaphycus baruensis) ; champignon parasite (Verticillium lecanii),
particulièrement efficace pendant la saison des pluies.
Lutte chimique : Pulvérisation hebdomadaire, jusqu’à disparition des cochenilles, de produits à base de Neem, d’huile horticole (200 ml/20 ld’eau) ou d’une solution huile-savon maison. De l’extrait de piment mélangé à de l’eau savonneuse. Arbre à savon d’Inde (Sapindus

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Mukorossi) aussi appelé Savonnier d’Inde) ces noix trempées pendant 48 heures produisent du savon qui a également des propriétés
insecticides. L’association avec Neem/Pongamia pinatta fonctionne bien contre les cochenilles et les cochenilles farineuses.
• Utilisation de pesticides synthétiques approuvés localement uniquement en dernier recours. Avant de procéder à l’application d’insecticides,
consultez toujours la liste des insecticides interdits et la liste d’atténuation des risques de l’Annexe 7 de la norme 2020 de Rainforest Alliance.
• Niveau seuil : >10 feuilles infestées de 1+ cochenille(s)Étape
Durée (dépend des espèces et Habitat
des conditions
environnementales)
Punaises (InformationsŒufs
5 à 26 jours
S’insère dans le tissu végétal d’un plant hôte

générales)

NympheLes jeunes nymphes s’agrègent souvent
Mobile, souvent spécifique à un hôte, mais se cache également
AdulteVariéedans les crevasses de l’écorce, les structures, etc.
Punaise du caféier (Habrochila placida) Ravageur sporadiquement grave.
••••

Punaise du caféier (Habrochila placida)

•
•
•
•

10 à 30 jours

Symptômes : L’infestation commence souvent sur les feuilles inférieures d’un petit groupe de caféiers. Petit
insecte ailé (4 mm de long). Les adultes et les nymphes sucent les feuilles. Les nymphes se nourrissent
toujours en groupe sur la face inférieure de la feuille.
Dégâts : Leur alimentation provoque des taches jaunes sur les feuilles. La face inférieure des feuilles
touchées est couverte de taches noires provenant de leurs excréments. Une attaque sévère entraîne lejaunissement et la chute des feuilles.
Favorisées par un temps chaud et sec et une utilisation irréfléchie de pesticides.
Prévention : Évitez l’utilisation de pesticides à large spectre pour protéger les ennemis naturels. Maintenez
la fertilité du sol par des ajouts réguliers de fumier et une fertilisation selon les besoins.
Lutte biologique : Punaise miride prédatrice (Stethoconus sp.), guêpes parasites, punaises assassines
prédatrices, larves de chrysopes, coccinelles, araignées sauteuses, punaises pirates et acariens prédateurs.
Lutte chimique : Savon insecticide, huile horticole, huile de Neem et produits à base de pyréthrine.
Utilisation de pesticides synthétiques approuvés localement uniquement en dernier recours. Avant deprocéder à l’application d’insecticides, consultez toujours la liste des insecticides interdits et la listed’atténuation des risques de l’Annexe 7 de la norme 2020 de Rainforest Alliance.
Niveau seuil : Pour une détection précoce, échantillonnez des buissons au hasard, en secouant le buisson
et en recueillant les punaises délogées sur une feuille de nylon blanc. Il est aussi possible d’utiliser desplaques vertes collantes pour le suivi. L’intervention est recommandée à raison de 2 punaises parpiège/jour.

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La punaise Antestia (Antestiopsis spp) est un des principaux ravageurs du caféier Arabica en Afrique de l’Est.
••
Punaises Antestia (Antestiopsis spp)

•
•
•
•
•

Dégâts : Les adultes et les nymphes se nourrissent de grains et provoquent des pourritures parl’intermédiaire du champignon Nematospora coryli. Il attaque également les boutons floraux qui
deviennent noirs et ne donnent pas de fruits. Les branches attaquées produisent des pousses latérales(ramification en éventail). Les grains séchés montrent que les grains « Zebra » produisent un café demauvaise qualité (goût de pomme de terre) et sont des voies possibles d’infection fongique.
Favorisées par un feuillage dense. Un autre rôle important pourrait être joué par les plants hôtes alternatifs,
notamment les adventices non contrôlées près des caféiers 11.
Prévention : taille et élagage, débourgeonnage réguliers et ponctuels.
Lutte biologique : Des guêpes parasites naturelles attaquent les œufs d’antestia. Les œufs attaqués sontnoirs alors que les œufs normaux sont blancs.
Lutte chimique : Pulvérisation d’extraits de Neem.
Utilisation de pesticides synthétiques approuvés localement uniquement en dernier recours. Avant deprocéder à l’application d’insecticides, consultez toujours la liste des insecticides interdits et la listed’atténuation des risques de l’Annexe 7 de la norme 2020 de Rainforest Alliance.
Niveau seuil : > 2 punaises/arbre

11 Pour une liste exhaustive de plantes hôtes alternatives possibles, voir Régis Babin et al, « The Antestia Bug Complex in Africa and Asia », in : « Invasive Stink Bugs and Related Species[…] », Chapitre : 10, Editeur : CRC Press, pages 465-494

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ÉtapeBorers du tronc(Infos générales)

HabitatŒuf

Durée (dépend des espèces etdes conditions
environnementales)
2 semaines

Larve

0,5 à 3 ans

À l’intérieur des parties ligneuses du plant hôtePupe

≅ 4 semaines

Adulte< 4 mois

À l’intérieur du plant hôte
Un coléoptère mobile et ailé à la recherche d’un plant hôte et d’un partenaire
sexuelS’insère dans le plant hôte

Borer blanc du tronc (Xylotrechus
quadripes) adulte

Larve du borer blanc du tronc.
Borer blanc du tronc de caféier(Monochamus leuconotus/syn. Anthores
leuconotus)

Dégâts causés à l’écorce par le borer blancdu tronc

Borer blanc du tronc (Xylotrechus quadripes) et Borer blanc du tronc de caféier (Monochamus//syn. Anthores leuconotus)
•
•
•
•
•

Symptômes : Poudre (semblable à de la sciure) sur le sol, écorce manquante. =Dégâts : Les feuilles se flétrissent et les branches ou des arbres entiers meurent.
Favorisés par un ombrage insuffisant, une faible altitude et des semis faibles. Les caféiers cultivés sur des sols peu profonds ou érodés ou à
proximité d’arbres d’ombrage sont plus susceptibles d’être attaqués. Les arbres les plus jeunes sont également plus susceptibles d’être
endommagés.
Prévention : Plantez à une altitude adéquate (> 800 m). Ne plantez pas de semis avec des racines pivotantes tordues/déformées. Veillez à labonne fertilité du sol pour que les arbres restent forts. Enlevez et brûlez les arbres ou les branches infestés.
Lutte biologique : Aucun n’est encore disponible dans le commerce. Les ennemis naturels sont les pics et les fourmis. Les larves sont attaquées
par le parasitoïde Aprostocetus ssp. et le champignon Beauvaria bassiana. Le fait d’étaler des huiles de cuisson ou des graisses animales surles trous creusés par les larves du borer du tronc du caféier attire les fourmis qui se nourrissent d’huiles et de graisses et finissent par pénétrer
dans les tunnels et tuer les larves du borer.

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••

Lutte chimique : comme les aliments sont cachés à l’intérieur de la tige, il est impossible de les combattre chimiquement. L’élimination entemps utile des premières infestations est la meilleure méthode de lutte.
Niveau seuil : Les agriculteurs doivent être vigilants dès la première observation de borers du tronc. À partir de 2 à 3 borers du tronc/arbre desinterventions, sont nécessaires.

Étape
Cochenilles
farineuses(Informations
générales)Œufs

Durée (dépend des espèces et desconditions environnementales)
1 semaine

Nymphe1 à 2 mois

AdulteHabitatDans un sac collant à l’aisselle des tiges ou des feuilles

Larves mobiles
Les mâles sont mobiles avec des ailes. Les femelles sont sessiles sur les pousses,
La femelle meurt après la ponte
les aisselles des feuilles et les nervures médianes ou les racines.
Cochenilles farineuses (Planococcus spp, Dysmicoccus ssp., Coccidella ssp., Ferrisia ssp., Formicoccus ssp.,
Nipaecoccus ssp., Rhizoecus ssp., Puto ssp., Neochavesia ssp., etc).
Ravageur commun, souvent entretenu par les fourmis.
•••

Cochenilles farineuses (Planococcus spp)•••

Dégâts : Les plants infectés perdent leurs feuilles. Une forte infestation peut entraîner la mort des plants.
Une infection secondaire par la fumagine est fréquente. A un impact négatif sur l’arôme (mauvaises
saveurs, acidité) et la qualité du café.
Favorisées par un temps chaud et la sécheresse ou une forte humidité et le froid. On le trouve souvent
dans les zones où l’on utilise beaucoup d’insecticides (surtout les organo-phosphorés), car les ennemis
naturels ont été éradiqués. L’enlèvement excessif des arbres d’ombrage provoque des exacerbations.
Prévention : Lutte contre les fourmis. Empêchez les fourmis de grimper dans l’arbre en plaçant une
bande collante autour du tronc. Cela aidera les ennemis naturels à lutte contre les petites colonies decochenilles farineuses. Maintenez des niveaux d’ombre adéquats (25-30 %). Conservez un microclimat
sain dans la plantation (paillage).
Lutte biologique : La meilleure lutte s’effectue à l’aide de la coccinelle prédatrice Crytolaemus
montrouzieri, dont les nymphes ressemblent à celles de la cochenille farineuse. Taux de libération
recommandé : 5 coléoptères/infestation de caféier Robusta, 3 coléoptères/infestation de caféierArabica.
En Inde, la chenille de Spalgis epeus, qui ressemble aussi à une cochenille farineuse, est le prédateur leplus commun de la cochenille farineuse. Les ennemis naturels comprennent également différentes
espèces de guêpes parasites et de chrysopes.
Lutte chimique : Des solutions maison à base d’huile de neem et de savon peuvent être pulvériséespour étouffer le parasite.

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Cochenilles farineuses (Planococcus
kenyae) affectant les baies du caféier••

Utilisation de pesticides synthétiques approuvés localement uniquement en dernier recours. Avant deprocéder à l’application d’insecticides, consultez toujours la liste des insecticides interdits et la listed’atténuation des risques de l’Annexe 7 de la norme 2020 de Rainforest Alliance.
Niveau seuil : les arbres infestés peuvent être traités individuellement par des applications sélectives.

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Cochenille des racines
Dysmicoccus cryptus, Planococcus ssp.
Dans certains cas, elle est associée à un champignon du sol (Polyporus coffeae) et à des fourmis.
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Cochenille des racines (Planococcus ssp.)

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Dégâts : S’attaque aux racines du caféier, suçant la sève des racines et provoquant des symptômes deflétrissement — jaunissement et chute des feuilles et mort d’arbres entiers.
Favorisé par les arbres âgés, faibles ou stressés par une nutrition inadéquate ou la sécheresse. Les hôtesalternatifs possibles sont d’autres plantes stressées et les graminées de la pelouse.
Prévention : Inspectez les racines des semis avant de les transplanter. Ne transplantez que des semis forts
et sains, exempts de parasites. Améliorez le statut des éléments nutritifs du sol par des ajouts de fumier etd’engrais. Appliquez un paillis pour éviter le stress dans la zone des racines et pour favoriser la croissancedes champignons pathogènes de la cochenille farineuse.
Lutte mécanique : Déracinez et brûlez les arbres atteints ou morts.
Lutte biologique : Le champignon Beauveria bassiana et le nématode Steinernema carpocapsae sontconnus pour provoquer une forte mortalité en peu de temps des cochenilles des racines femelles adultes.
Ils ont besoin de certains niveaux d’humidité dans le sol.
Lutte chimique : Les pyréthrines ou les pyréthroïdes peuvent montrer une certaine efficacité, mais leursapplications doivent être évitées si possible. Utilisation de pesticides synthétiques approuvés localement
uniquement en dernier recours. Avant de procéder à l’application d’insecticides, consultez toujours laliste des insecticides interdits et la liste d’atténuation des risques de l’Annexe 7 de la norme 2020 deRainforest Alliance.
Niveau seuil : Surveillez l’activité des fourmis dans la zone de la tige/racine. Chaque arbre infesté doit êtredéraciné ou traité.

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MALADIES COURANTES DU CAFEIER
La plupart des maladies du caféier sont causées par des champignons pathogènes et dans une moindre mesure par des bactéries et des virus.
La maladie du pourridié, la rouille et la maladie des baies du caféier peuvent attaquer des arbres sains sans faiblesse physiologique particulière,
alors que la plupart des autres maladies d’importance économique n’apparaissent que sur des arbres physiologiquement affaiblis (Fabienne
Ribeyre, CIRAD, 2012)

Rouille des feuilles du caféier (CLR)

Rouille des feuilles du caféier CLR (Hemileia vastatrix)

Défoliation et dépérissement causés par la rouille desfeuilles du caféier

Rouille des feuilles du caféier CLR (Hemileia vastatrix) maladie fongique qui attaque surtout les feuilles âgées.
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Symptômes : Les lésions de rouille se présentent sous la forme de taches jaunes ou orange sur la face inférieure de la feuille, qui s’amalgament
au fur et à mesure que la maladie progresse.
Dégâts : Peut conduire à la défoliation de la plantation si elle n’est pas contrôlée. La maladie a un effet d’affaiblissement sur les arbres au fil
des saisons. Une infestation sévère peut entraîner jusqu’à 75 % de pertes de rendement et une réduction de la qualité du café.
Plus répandue dans les plantations de C. arabica cultivées dans des conditions humides à des altitudes plus basses (1000 m.a.s.l.). à
1500 m.a.s.l.).
Favorisée par des conditions humides ou mouillées (par exemple, des températures nocturnes > 15 C), lorsque les feuilles restent humides
pendant au moins 3 heures. Une faible fertilité du sol et un faible pH augmentent les dégâts.
Prévention : Utilisation de variétés résistantes (veuillez consulter votre agent de vulgarisation agronomique local ou votre institut de recherche
pour choisir la bonne variété).
Optimisez l’espacement et la taille et de l’élagage pour améliorer l’aération et éviter que l’humidité reste sur les feuilles pendant des périodes
prolongées, ce qui favorise le développement des champignons.
Lutte biologique : Les ennemis naturels de la CLR sont des agents pathogènes parasitaires comme Verticillium lecanii et Darluca ssp. Certains
insectes et acariens se nourrissent également des spores de la rouille, mais aucun d’entre eux n’est encore exploité commercialement.

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Lutte chimique : de manière générale, lutte à base de fongicides, qui sont toutefois très coûteux. Application avant le début et pendant lapremière période de la saison des pluies. Le fongicide doit être réappliqué après chaque pluie. Il faut prendre soin d’appliquer le fongicide surla face inférieure des feuilles.
Des applications de cuivre ont été utilisées dans les pays producteurs de café pour lutter contre la maladie.
Seuil : 1 % de feuilles infectées nécessite des actions de lutte culturale et d’hygiène. 20 % de feuilles infectées correspondent à une infection
sévère.

Trachéomycose du caféier (CWD)

La trachéomycose du caféier (CWD) (Fusarium xylarioides)
apparaît sur la gauche

Baies mûries prématurément et branches noircies par la
CWD

Décoloration bleu-noir typique sous l’écorce d’une tige
infectée par la CWD

La trachéomycose du caféier (CWD) également connue sous le nom de « fusariose »,affecte les caféiers arabica et robusta, ainsi que les espèces sauvages de caféiers. Il s’agit d’une maladie de flétrissement vasculaire causée par lechampignon Fusarium xylarioides.
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Symptômes : L’affaissement des feuilles est le premier signe de la CWD. Les feuilles sont molles, jaunissent, puis se dessèchent et finissent partomber, laissant les arbres touchés complètement sans feuilles. Un symptôme unique permettant d’identifier la CWD est une décoloration
bleu-noir du bois, directement sous l’écorce, vers la base de la tige.
Dégâts : Le « dépérissement » commence souvent sur un côté de l’arbre, mais s’étend rapidement à l’ensemble de l’arbre. Les grains
immatures mûrissent prématurément, ce qui a un impact négatif sur l’arôme et l’amertume.
Favorisée par un pH faible, l’engorgement des eaux, les blessures aux racines.
Prévention : Le matériel végétal ne doit pas provenir de zones où des infections par la CWD sont connues. N’utilisez que des semences et dumatériel de bouturage exempts de maladies.
Les arbres infectés doivent être déracinés et brûlés immédiatement. Des inspections régulières contribuent à la détection précoce de lamaladie et aident à contenir sa propagation. Les zones touchées doivent être retirées de la production de café pendant plusieurs années.
Lutte chimique : peu de chances d’être efficace, car l’agent pathogène vit dans le sol ou à l’intérieur du plant, ce qui le rend difficile à cibler,même avec des fongicides systémiques.
Niveau seuil : Action immédiate requise si des symptômes sont observés

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Maladie des baies du caféier (CBD)

Maladie des baies du caféier (Colletotrichum kahawae)

Lésions typiques et sporulation sur des baies de café vert affectées par la CBD

Maladie des baies du caféier (CBD)
qui n’affecte que le caféier arabica. Elle est causée par le champignon Colletotrichum kahawae et est endémique à l’Afrique.
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Symptômes : À n’importe quel stade, les baies deviennent noires, sèches, ridées et pourries, avec une peau dure. Les baies sont les plus
résistantes pendant le premier mois et à pleine maturité.
Dégâts : baies momifiées, qui peuvent causer des pertes de rendement considérables, jusqu’à 75 %, si elles ne sont pas contrôlées de manière
adéquate.
Favorisée par des conditions humides ou de fortes précipitations et des températures autour de 22 C. Prévalent dans les zones à régime
pluvial bimodal. Les plantations qui reçoivent régulièrement des applications de cuivre sont plus sensibles à la CBD.
Prévention : Utilisation de variétés résistantes comme Ruiru 11, Hibrido de timor, Rume Sudan, 45 K7 et plusieurs Catimors. Plantations plus
espacées et taille et élagage adéquat pour éviter une humidité prolongée et une humidité relative élevée après des périodes de pluie. Pourla même raison, évitez un ombrage trop dense. Toutes les baies doivent être retirées à la fin de la saison de culture, car elles constituent une
source d’inoculum pour la nouvelle culture.
Lutte biologique : Des champignons et des bactéries naturels agissent comme des antagonistes de la CBD, mais aucun n’est encore
disponible dans le commerce.
Lutte chimique : Fongicides. Des applications insuffisantes sont plus néfastes que l’absence totale d’application.
Niveau seuil : Aucune information disponible, car l’efficacité de l’utilisation de fongicides n’a pas encore été prouvée.

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Maladie américaine des taches foliaires (ALSD)

Maladie américaine des taches foliaires (ALSD) (Mycena citricolor) taches sur les feuilles et
les baies vertes

Maladie américaine des taches foliaires (ALSD) (Mycena citricolor) Maladie fongique dans les néotropiques
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Symptômes : taches brunes et sèches sur toutes les parties aériennes des plants.
Dégâts : peut provoquer une défoliation importante, entraînant une réduction de la croissance, une perte de baies et, par conséquent, uneperte de rendement pouvant atteindre 20 %, ainsi qu’une baisse de qualité.
Favorisée par les caféiers cultivés en haute altitude, les conditions humides, une couverture nuageuse trop importante (faible rayonnement)
et des niveaux d’ombrage élevés. Elle est également favorisée par des conditions climatiques irrégulières et se propage par le manqued’hygiène.
Prévention : Ajustez les niveaux d’ombrage pour réduire l’humidité. L’hygiène est essentielle pour lutter contre cette maladie. Retirez toutes lessources d’inoculum.
Lutte biologique : La recherche sur les bactéries antagonistes semble fructueuse, mais n’a pas encore été commercialisée.
Lutte chimique : Fongicides comme la bouillie bordelaise et d’autres fongicides à base de cuivre ou, dans les cas graves, le Triazole. Il a été
démontré que l’application d’hydroxyde de calcium supprime les symptômes. (Rao et Tewari, 1988). Utilisation de pesticides synthétiques
approuvés localement uniquement en dernier recours. Avant de procéder à l’application d’insecticides, consultez toujours la liste desinsecticides interdits et la liste d’atténuation des risques de l’Annexe 7 de la norme 2020 de Rainforest Alliance.
Niveau seuil : Les mesures d’hygiène et l’adaptation de l’ombrage doivent commencer dès l’apparition des premiers symptômes. Niveau
seuil de la lutte chimique : 15 lésions/feuille.

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Maladie des yeux bruns

Maladie des yeux bruns (Mycosphaerella coffeicola et
Cercospora coffeicola) sur les feuilles

Maladie des yeux bruns sur les semis

Tache des baies causée par Cercospora coffeicola

Maladie des yeux bruns (Mycosphaerella coffeicola et Cercospora coffeicola)
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Dégâts : Les baies infectées se ratatinent et mûrissent avant que les grains ne soient mûrs, ce qui donne des saveurs désagréables. D’autres
champignons envahissent souvent les baies à la suite d’infections de Cercospora.
Favorisée par des conditions de croissance plus fraîches et humides au-dessus de 600 m d’altitude, sous une faible ombre, une forte humidité
et la pluie, ou des températures chaudes et la sécheresse après la floraison. Apparaît généralement dans les zones de mauvaise nutrition(notamment, carence en azote et en potassium) ou d’ombrage insuffisant.
Prévention : Améliorez la fertilité des sols et la gestion de l’ombre. Améliorez l’aération par un espacement adéquat et une taille qui permet unmouvement d’air suffisant. Évitez la saturation en eau. Luttez contre la concurrence des adventices par un paillage suffisant ou des culturesde couverture. Retirez les matériaux de taille des plants infectés, car les spores restant dans la plantation infecteront d’autres plants.
Augmentez la densité de l’ombre.
Lutte chimique : 3 applications/mois de produits à base de cuivre à partir de la floraison. Avertissement : la surutilisation du cuivre peut
entraîner une toxicité du cuivre dans le sol et être également nuisible aux insectes bénéfiques qui luttent contre les cochenilles du café. Desapplications mensuelles de captafol (0,3 %) sont recommandées pour les pépinières. Utilisation de pesticides synthétiques approuvés
localement uniquement en dernier recours. Avant de procéder à l’application d’insecticides, consultez toujours la liste des insecticides
interdits et la liste d’atténuation des risques de l’Annexe 7 de la norme 2020 de Rainforest Alliance.
Niveau seuil : 20 % à 35 % de plants attaqués

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Brûlure bactérienne du café BBCBrûlure bactérienne du café BBC (Pseudomonas syringae pv. garcae) symptômes sur feuilles

BBC symptômes sur les brindilles et les feuillesBrûlure bactérienne du café BBC (Pseudomonas syringae pv. garcae)
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Symptômes : Les feuilles s’assèchent, s’enroulent vers l’intérieur, mais ne tombent pas. Les brindilles dépérissent à mesure que l’infections’étend vers le bas à partir du bourgeon terminal.
Dégâts : Les fleurs et les fructifications en tête d’épingle se ratatinent, deviennent noires et la récolte entière peut être perdue.
Favorisée par un temps frais et humide, des blessures sur le plant et des taux élevés de fertilisation azotée.
Prévention : N’utilisez pas de semis ou de matériel végétal provenant de zones sujettes à la BBC. Évitez de blesser l’arbre pendant la taille etl’élagage. Fractionnez l’application de N ou appliquez du fumier animal à la place de l’engrais N. Coupez et brûlez les brindilles et lesbranches infectées. Débourgeonnage fréquent. Évitez d’élaguer ou de tailler lorsque les arbres sont mouillés. Utilisez des variétés résistantes.
Lutte chimique : Les produits à base de cuivre sont les plus efficaces, mais il faut faire attention à la toxicité du cuivre qui s’accumule dans lesol.
Niveau seuil : Des mesures d’hygiène doivent être prises immédiatement sur chaque arbre infesté.

Fonte des semis
Fonte des semis (Pythium spp. ou Rhizoctonia solani) i
est une maladie fongique qui affecte les jeunes plants en pépinière.
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Fonte des semis (Pythium spp)

Symptômes : Les parcelles de jeunes plants meurent rapidement, leurs tiges sont noires et pourries.
Dégâts : Perte économique due à l’échec des semis.
Favorisée par un sol humide, une ombre trop importante et une forte densité de plants qui empêche
une circulation suffisante de l’air.
Prévention : Veillez à ce que les conditions du lit de semence permettent un séchage suffisant du sol.
Espacez les semis de 2,5 cm x 10 cm. Ne réutilisez pas le vieux sol, car la maladie est transmise par le sol
et peut se propager.

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Lutte chimique : Les arrosages du sol avec du Benomyl sont possibles, mais souvent injustifiés.
L’amélioration des conditions de drainage est généralement suffisante.
Niveau seuil : aucun, car la maladie tue et les traitements ne peuvent être que préventifs.

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Brûlure foliaire du caféierBrûlure foliaire du caféier(Phoma costaricensis), maladie fongique connue au Costa Rica sous le nom de « derrite ou
quema ». Elle est devenue plus courante en raison du changement climatique erratique.
•Brûlure foliaire du caféier(Phoma costarricensis) sur les feuilles•••

Favorisée par des zones de culture situées à environ 1400 m d’altitude ou par des conditions deforte condensation ou de pluies fréquentes, de vents modérés et de températures moyennes
d’environ 20 °C, qui font que les feuilles restent humides plus longtemps. Une faible fertilité du sol
augmente les dégâts.
Prévention : Utilisez des pare-vent.
Niveau seuil :L’évaluation précise de la gravité de la maladie est difficile et les agriculteurs doivent consulter unconseiller local.

Brûlure foliaire du caféier dégâts causés sur les baies
de caféier50
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INFORMATIONS COMPLEMENTAIRES
Application de Rainforest Alliance sur les pesticides et leurs alternatives :https://play.google.com/store/apps/details?id=org.ipmcoalition.pesticidealternatives
https://apps.apple.com/app/id1461460997#?platform=iphone
CABI et infonet biovision ont tous deux publié des listes complètes des maladies du caféier,consultable ici : https://www.plantwise.org/FullTextPDF/2018/20187800554.pdf et ici :https://www.infonet-biovision.org/PlantHealth/Crops/Coffee#simple-table-of-contents-3
KALRO a publié un manuel de culture du caféier qui présente les maladies et les parasites ducaféier d’Afrique de l’Est. Vous pouvez le trouver ici :http://www.kalro.org/sites/default/files/Coffee_Propagation_Production_Manual_13_Feb_2019_ed_LW.pdf
Un article très instructif de C. Staver et al. sur la gestion de l’ombrage dans les plantations decaféiers pour lutter contre les parasites et les maladies peut être consulté ici :https://sites.evergreen.edu/terroir/wp-content/uploads/sites/134/2015/10/Designing-pestsuppresive-multistrata-systems_-coffee.pdf
Crédits photo :AVELINO, Jacques (CIRAD/IICA-PROMECAFE/CATIE)LADERACH, Peter (CIAT)COLLET, Laure (CIAT)BARQUERO, Miguel (ICAFE)CILAS, Christian (CIRAD)
Infonet-biovision
http://www.fao.org/3/ae939e/ae939e0b.htm
CABI - Plantwise Knowledge Bank
Georg Goergen/IITA Insect Museum, Cotonou, BeninKohler F, Pellegrin F, Jackson G, McKenzie E (1997) Diseases of cultivated crops in Pacific Island countries. South Pacific Commission. Pirie Printers Pty Limited,
Canberra, Australie.
Jonathan D. Eisenback, Virginia Polytechnic Institute and State University, Bugwood.org
https://www.molidoyservido.com
A. A. Seif, icipe
Luis Miguel Constantino, et.al., Natural enemies of the coffee leaf miner Leucoptera coffeella (Lepidoptera: Lyonetiidae), Jun 2018
Noah Phiri, CABI
Mike Rutherford, CABI
Julie Flood, CABI
Nelson, S.C. Cercospora Leaf Spot and Berry Blotch of Coffee. Plant Disease. PD-41, 2008.
Casa Brasil Coffees, 415 E. St. Elmo Rd Ste 4A Austin, TX 78745
Thais D. M. Pongeluppi, Phoma no cafeeiro - diversos fungos em uma mesma planta, Nov 2018, BASFANACAFE, 2014
Cody Lance, UK
Julio Guevara, Perfect Daily Grind Ltd, UK
Grahame Jackson, CABI (2015)
Jennifer Hashim, UCCE Kern Co. and Steven J. Castle, USDA-ARS, University of California
Flávia Patrício, Agrolink
Uganda Training Materials for Coffee Production, First edition, 2014
Gabisa Giddisa Hinkosa, Alemu Lencho, Thangavel Selvaraj, Arvind B Chavhan, Kasahun Sadessa

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CONSEILS SPECIFIQUES AU THEIER
Clause de non-responsabilité
Ce document d’orientation sur la PIC spécifique aux cultures n’entend pas couvrir tous lesravageurs par culture. L’objectif est de présenter les ravageurs/maladies les plus courants qui
affectent certaines cultures dans plusieurs régions du monde.

Informations générales
Théier (Camellia sinensis var. sinensis et C. sinensis var. assamica) Recommandations

Choix d’un site adéquat
pour la culture

Altitude

ConditionsdecroissancePente

Température
Précipitations
Humidité

Choix de variétés decultures saines adaptées
au siteMesures de lutte contrel’érosion

Le théier a besoin d’un climat modérément chaud ethumide, que l’on trouve dans des conditions tropicales plusfraîches. Le théier est une plante forestière qui préfère lessols forestiers défrichés, mais aussi tout sol fertile, en
particulier les sols rouges, car il tolère bien les niveaux élevésd’aluminium. Les sols doivent être bien drainés et d’une
profondeur d’environ 1 à 1,5 m qui fournit néanmoins une
humidité suffisante tout au long de l’année. La proximité dela forêt d’origine permet de bénéficier d’un microclimat
idéal et d’une protection contre le vent. Dans unenvironnement agro-écologique approprié, il n’est pasdifficile de cultiver du thé sans utiliser de pesticides. La
pression exercée par les maladies et les ravageurs est un
signe certain de conditions de culture inadéquates ou
d’une mauvaise gestion.
800 à 2000 m.a.s.l.
Une légère pente est nécessaire pour permettre un bon
drainage.
15 à 25° = très fortement approprié
pente faible (>5– 7°) = hautement approprié
pente très raide » (> 35°) inadaptée. Sur les terrains
relativement plats, il faut prévoir un drainage adéquat pourévacuer l’eau du sous-sol
16 à 30 °C avec une température moyenne de 21 à 26 °C
durant la saison de croissance
De 1250 à 2000 mm bien distribués durant 8 à 9 mois par an~ 80 % tout au long de l’année
La préférence doit être donnée aux variétés adaptées aux
conditions climatiques du lieu. Le C. sinensis, bien qu’ayant
un rendement plus faible, est connu pour être plus rustique,étant plus résistant au froid et à la sécheresse. Pour le Kenya,les variétés NGC15, NGC17, NGC19, C235 et C357 se sontrévélées très résistantes aux insectes nuisibles.
Il est également recommandé qu’un seul clone ne dépasse
pas 10 % de la plantation, mais qu’un mélange de différents
clones soit planté.
Plantation de contours dans des haies simples ou doubles.
Les cultures profondes ou le désherbage intensif doiventêtre évités, car ils endommageraient également les racines
des théiers. Les adventices doivent cependant êtrecontrôlées, c’est pourquoi il faut planter une couverture desol entre les rangées comme : Eragrostis curvula, Tephrosia
candida, Crotalaria anagyroides ou Crotolaria
usaramoensis. Des niveaux d’ombrage adéquats
permettent également de réguler la température desfeuilles, d’ajouter de la matière organique aux sols, de servir

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Maintien de la fertilité etde la santé des sols

Maintien de niveauxadéquats de matièreorganique du sol (MOS)

Maintien de niveauxd’ombrage adéquatsde coupe-vent, d’accroître la biodiversité, d’attirer lesoiseaux et de supprimer les adventices.
Les plants affaiblis produisent non seulement une mauvaise
récolte, mais sont également plus sensibles aux attaquesdes ravageurs et des maladies. Dans l’idéal, les sols sonttestés une fois par an et le type et la quantité recommandésd’intrant sont appliqués. Une nutrition équilibrée (NPK),
basée sur l’analyse du sol, les rendements des cultures et lasituation géographique est recommandée.
Des applications de fumier organique avec des applications
d’engrais inorganiques augmentent le taux d’assimilation
des nutriments. Plage de pH (H20) recommandée : 4,5 - 5,0(Pour plus de détails, veuillez vous reporter au documentd’orientation sur les sols.)
Le taux adéquat de MOS varie en fonction de lagéographie et de l’altitude : si 1,2 à 3 % est un taux idéal
pour les basses altitudes, on conservera plutôt 3 à 6 % pourles hautes altitudes. La MOS aide à maintenir les niveaux demicro-organismes bénéfiques, assure un bon drainage (lethéier ne tolère pas la saturation en eau), ainsi que desniveaux de rétention d’eau adéquats. Pour augmenter etmaintenir des niveaux adéquats de MOS, des ajouts
fréquents de fumier animal ou de compost sont nécessaires,
ainsi qu’un paillage (y compris avec des tailles de théiers
laissées sur place). La litière de feuilles des arbresd’ombrage fournit également des quantités substantiellesde MOS.
La recommandation est de 20 à 50 % de niveauxd’ombrage. L’ombre est nécessaire pour protéger les théiers
du stress de la sécheresse et de la surexposition au soleil, qui
provoque le jaunissement ou le dépérissement. Cependant,
trop d’ombre réduit la production et peut créer un
microclimat trop humide, ce qui peut favoriser les maladies
fongiques. Le niveau d’ombrage doit donc être bien
réfléchi. D’autre part, la dispersion des agents pathogènes
par les éclaboussures de pluie et le vent est minimisée si laforce de la pluie et du vent est réduite par des arbresd’ombrage. Les arbres d’ombrage légumineux comme
Erythrina subumbrans, Erythrina lithosperma, Gliricidia
sepium, Cassia siamea, ou Albizia polycephala Albizia
coriaria, Albizzia chinensis, Albizzia Procers, albizzia
odrotissima, albizzia chinensis, acacia lenticularis, dalbergia
sericea établis à 7 x 10 m contribuent également à la fertilité
du sol. L’espacement suggéré pour les arbres à boisd’œuvre plus grands comme le Grevillea, le cyprès ou le pin
est de 10-12 x 10-12 m plantés dans les rangées de théiers.
Pour les pare-vent, on peut utiliser des bananes ou desHakea salign. Dans les plaines, lorsque l’on plante un théierjeune, il est conseillé de planter un arbre d’ombrage
temporaire à croissance rapide entre les espècesd’ombrage permanentes.

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RAVAGEURS COURANTS DU THEIER
Type de ravageur

Punaises du thé(Infos générales)

Stades de vie du ravageur qui causent des dommages
Stades de vie du ravageur qui ne causent PAS de dommages
Étape

Durée (dépend des espèces et desconditions environnementales)

HabitatŒuf5 à 26 jours

S’insère dans le tissu végétal d’un plant hôte

Nymphe10 à 30 jours

Les jeunes nymphes s’agrègent souvent

AdulteVariéeMobile, souvent spécifique à un hôte, mais se cache également
dans les crevasses de l’écorce, les structures, etc.

Punaise du thé (Helopeltis antonii/theivora)••

Helopeltis antonii/theivora

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Dégâts sur la feuille causés par la
punaise du thé••

Alternez les plantes hôtes : Les adventices comme Mikania cordata/micrantha, Bidens biternata, Emillia sp.,
Polygonum chinese et Lantana camara. Noix de cajou, neem, moringa et goyave.
Symptômes : Les punaises adultes et les nymphes orange poilues sucent la sève des feuilles fraîches et despousses tendres, provoquant des taches nécrotiques rouge brunâtre.
Dégâts : les feuilles se recroquevillent, se dessèchent et meurent.
Actives tôt le matin et tard le soir, et pendant la journée par temps couvert.
Favorisée par un enlèvement incomplet des tiges/une rupture des tiges lors de la cueillette. Les punaises duthé privilégient la ponte des œufs sur ces extrémités cassées des pousses cueillies. Températures > 15 °C.
Prévention : Retirez et détruisez au mieux les insectes et les parties de plants endommagées pendant les
premiers stades. Supprimez les adventices grâce à un paillage complet. Évitez de planter des jats de Chine etdu matériel clonal sensible comme TV-1, P-126A dans les zones sujettes aux punaises.
Lutte biologique : Parasitoïdes : Mymarid, Erythmelus helopeltidis. Prédateurs : Chrysoperla zastrowii
sillemi/carnea, Mallada sp, araignée-lynx (Oxyopes sheweta), punaise Reduviidae, mantes religieuses. Agents
pathogènes : Nématodes (Hexamermis ssp.), champignon Beauveria bassiana
Lutte mécanique : Le skiff a sévèrement affecté les parcelles. Cueillez le plus possible en enlevant toutes lesfeuilles au-dessus de la table de cueillette et toutes les feuilles affectées visibles. Cueillez par cycles courts.
Lutte chimique : « Spinosad », terre de diatomées ou pulvérisations de pyrèthre tôt le matin. Pulvérisation d’un
extrait chloroforme à 5 % de Pongamia pinnata. Utilisation de pesticides synthétiques approuvés localement
uniquement en dernier recours. Avant de procéder à l’application d’insecticides, consultez toujours la liste
des insecticides interdits et la liste d’atténuation des risques de l’Annexe 7 de la norme 2020 de Rainforest
Alliance.
Niveau seuil : 5 % d’infestation ou 8 punaises Helopeltis adultes/2 m2

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Œuf

Durée (dépend des espèces etdes conditions
environnementales)
2 semaines

Larve

0,5 à 3 ans

Pupe≅ 4 semaines

Étape

Borers du tronc(Infos générales)

Habitats’insèrent dans le plant hôte
à l’intérieur des parties ligneuses du plant hôte

à l’intérieur du plant hôte
un coléoptère mobile et ailé à la recherche d’un plant hôte et d’un
Adulte< 4 moispartenaire sexuel
Scolyte des rameaux du théier (Xyleborus fornicatus)••••
Scolyte des rameaux du théier(Xyleborus fornicatus)•••

Symptômes : Perce des trous typiques de « forage » dans les racines et la partie inférieure du tronc principal ; dela poudre sort des trous.
Dégâts : Les larves creusent des tunnels dans les parties boisées des buissons. Pertes de récoltes de 18 à 40 %Un problème de taille dans les zones de basse et moyenne altitude sur des sols mal drainés. Plants hôtes faibles.
Prévention : Évitez la saturation en eau. Retirez les branches affectées. Appliquez de l’azote et du potassium
dans un rapport de 1:2. Placez 400 tiges fanées de Montanoa bipinnatifida par ha pour attirer les adultes duscolyte et brûlez-les régulièrement. Évitez le matériel de plantation sensible, comme les clones TRI2024 et TRI2025
dans les zones exposées au scolyte des rameaux.
Lutte biologique : Spray Beauveria bassiana poudre mouillable
Lutte chimique : Couvrez la tige principale avec de la pâte de Carbaryl. Utilisation de pesticides synthétiques
approuvés localement uniquement en dernier recours. Avant de procéder à l’application d’insecticides,
consultez toujours la liste des insecticides interdits et la liste d’atténuation des risques de l’Annexe 7 de la norme
2020 de Rainforest Alliance.
Niveau seuil : 15 % d’infestation

Dégâts typiques causés par lescolyte sur la tige

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ÉtapeAcariens (Informations
générales)ŒufHabitatDessous des feuilles
Avant de se transformer en adultes, les nymphes se cachent dans le sol
Nymphe5 à 6 jours
sans se nourrir
Adulte2 à 4 semaines
Dessous des feuilles
L’araignée rouge (Oligonychus coffeae), l’acarien écarlate (Brevipalpus californicus), l’acarien pourpre (Calacarus
carnatus), l’acarien rose (Acaphylla theae) et l’acarien jaune (Polyphagota rosnemus latus)
•
•
•
•
•
•

Dégâts causés par l’acarienécarlate (Brevipalpus
californicus) sur les feuilles dethéierDurée (dépend des espèces etdes conditions
environnementales)
4 à 5 jours••

Symptômes : Les dégâts apparaissent généralement d’abord le long de la nervure médiane, puis se propagent
le long des veines. Les feuilles deviennent grisâtres ou brunâtres-pâles et cassantes.
Dégâts : Les nymphes et les adultes percent le tissu foliaire et sucent la sève ; le plant perd de sa vigueur et lesfeuilles infestées ne sont plus consommables. Une infestation sévère peut entraîner le dessèchement des feuilles
et la défoliation.
Favorisés par la sécheresse et une cueillette tardive ou excessive. Absence d’ombre. Températures supérieures à
25 °C, faible humidité ; altitudes inférieures à 1500 m.a.s.l.
Prévention : Améliorez le microclimat et les niveaux de matière organique du sol pour éviter le stress de lasécheresse. Augmentez le niveau d’ombrage.
Lutte mécanique : Retirez toutes les parties infestées.
Lutte biologique : Acariens prédateurs (Ambleyseius ssp., Agistemus spp, Zetzellia ssp., etc.) Thrips prédateurs(Oligota spp.), punaise pirate (Orius ssp, Wollastionella testudo), syrphes, punaise miride, Chrysoperla carnea.
Champignons pathogènes : Penicillium ssp., Aspergillus ssp., Cladosporium ssp., Botryosporium., Verticillium
lecanii.
Lutte chimique : Huile d’horticulture ou spray savon-huile maison (huile blanche)
Niveau seuil : 50 % de feuilles infestées ou 5 acariens adultes ou 25 œufs par feuille

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Œufs

Durée (dépend des espèces etdes conditions
environnementales)
7 jours

Nymphe3 semaines

Étape

Thrips (Informations
générales)

Adulte< 30 jours
Thrips (Scirtothrips bispinosus)
•
•

•
•
•
•

Dégâts causés par les thrips(Scirtothrips bispinosus)••

HabitatS’insère dans le tissu végétal
Avant de se transformer en adultes, les nymphes se cachent dans le solsans se nourrir
Dessous des feuilles

Symptômes : La surface des feuilles devient irrégulière, frisée et tachetée et présente des lignes parallèles demarques d’alimentation argentées de chaque côté de la nervure centrale.
Dégâts : les jeunes nymphes et les adultes préfèrent sucer la sève des jeunes feuilles et des bourgeons
perdent leur vigueur, les feuilles se flétrissent. Les feuilles infestées se déforment, se froissent et deviennent
inutilisables. Au niveau du seuil, les thrips peuvent causer jusqu’à 13 % de perte de rendement. Vecteur devirus.
Favorisé par l’absence d’ombre, les conditions chaudes et humides ; dans certaines zones de culture, letemps sec est propice à leur croissanceApplications fréquentes du cuivre.
Prévention : Maintenez des niveaux d’ombrage optimaux.
Lutte biologique : Anthocoris et Orius spp., punaises Wollastoniella testudo, thrips prédateurs (Aeolothrips
intermedius, Mymarothrips garuda), acariens prédateurs de la sous-famille des Stigmaeidae. Chrysoperlacarnea, Mallada ssp., mantes religieuses, coccinelles, mouches syrphides, araignées, etc. Agents
pathogènes : Steinernema ssp., Verticillium lecanii, Beauveria bassiana, Metarhizium anisopliae, Paecilomyces
fumerosus
Lutte chimique : Huile horticole, ou un insecticide prescrit. Utilisation de pesticides synthétiques approuvés
localement uniquement en dernier recours. Avant de procéder à l’application d’insecticides, consultez
toujours la liste des insecticides interdits et la liste d’atténuation des risques de l’Annexe 7 de la norme 2020 deRainforest Alliance.
Niveau seuil : 3 thrips par pousse,

Dégâts causés par les thrips sur lesfeuilles — lignes parallèles à lanervure médiane

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Œuf

Durée (dépend des espèces etdes conditions
environnementales)1 à 3 semainesLarve

3 à 4 semaines

Pupe

1 à 2 semaines

Adulte< 1 mois

Étape

Papillons de nuit et papillons de jour
(Infos générales)

Arpenteuse du théier papillon de nuit (Biston suppressaria)

HabitatÀ la surface ou s’insère dans le plant hôte
Se nourrit sur ou dans les tissus du plant hôte
Suspendus au plant hôte ou enroulés dans une feuille.
Certaines se nymphosent dans le sol.
Ailes mobiles

Chenilles du cul-brun (Euproctis pseudoconspersa)

Chenille quenouille (Andraca bipunctata)

Les chenilles de papillons diurnes et nocturnes de l’ordre des lépidoptères, comme les Coleophoridae (Coleophora scaleuta ou C. vigilis), la chenillequenouille (Andraca bipunctata), la chenille du cul-brun (Euproctis pseudoconspersa), l’arpenteuse du théier (Biston suppressaria) ou Endoclita ssp
•
•
•
•
•
•
•
•

Symptômes : les chenilles apparaissent en masses agrégées et défolient les feuilles.
Dégâts : 2 générations par an peuvent détruire plusieurs buissons de la plantation de théiers.
Favorisés par la lutte chimique contre le scolyte des rameaux qui éradique également les parasitoïdes des chenilles.
Prévention : Redoublez de vigilance chaque fois qu’une nouvelle pousse se développe et réagissez tôt, avant que plusieurs générations ne sedéveloppent.
Lutte mécanique : Les plus petites populations peuvent être enlevées ou écrasées à la main si elles sont détectées suffisamment tôt.
Lutte biologique : Parasitoïdes larvaires : Mouche tachinide, Cylindromyia sp., Cotesia ruficrus, guêpes braconides (Macrocentrus homonae) ;Agent pathogène : Bacillus thuringensis. Euproctis pseudoconspersa NPV (EupsNPV) est pathogène pour la chenille du cul-brun.
Lutte chimique : Applications de l’huile de neem.
Niveau seuil : 15 % de feuilles endommagées ou 4 à 5 chenilles par plant.

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Les chenilles des tordeuses du thé comme (Caloptilia theivora, Adoxophyes honmai ou Homonamagnanima)•

Feuille de théier enroulée par les chenilles de Caloptilia
theivora, Adoxophyes honmai ou Homona magnanima

Symptômes : Les larves enroulent les feuilles et se nourrissent de l’intérieur. Certaines senymphosent également à l’intérieur d’un nid de feuilles enroulées.
• Dégâts : Cause des dégâts sporadiques.
• Favorisés par la lutte chimique contre le scolyte des rameaux qui éradique également lesparasitoïdes des chenilles.
• Prévention : 5 pièges à phéromones/ha, suspendus à 30 cm au-dessus du couvert végétal ;remplacement des appâts une ou deux fois par mois, en fonction des conditions climatiques.
• Lutte biologique : Guêpes braconides (Macrocentrus homonae) ; Bacillus thuringensis• Lutte chimique : Non recommandée• Niveau seuil : 5 feuilles enroulées par buisson ou 8 papillons par jour/piège.
Ver rouge du caféier (Zeuzera coffeae) (larves)
•
•
•
•
•

Ver rouge du caféier (Zeuzera coffeae) à l’intérieur d’une
branche•••Symptômes : La chenille perce la tige ou les branches qui présentent alors un flétrissement.
Des excréments en forme de boulettes s’accumulent à la base du plant.
Dégâts : Dans les cas avancés, la branche se dessèche.
Favorisé par : les conditions de forte luminosité.
Prévention : Une ombre suffisante.
Lutte mécanique : Coupez et brûlez les branches affectées, ce qui s’avère être le plus
efficace.
Lutte biologique : Champignon (Beauveria bassiana) ou Gibberella fujikuroi ; Guêpe
braconide (Amyosoma zeuzerae) ; Parasitoïdes : Bracon zeuzerae, Isosturmia chatterjeeana,
Myosoma chinensis, Senometopia kockiana.
Lutte chimique : Vaporisations d’huile de neem ou de soufre de chaux.
Niveau seuil : 15 trous pour 45 buissons.

Ver rouge du caféier (Zeuzera coffeae) papillon adulte

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ÉtapePucerons(Infos générales)

Durée (dépend des espèces etdes conditions
environnementales)

HabitatCycle de vie de 10 à 14 jours

Dessous des feuilles, jeunes pousses, branches vertesŒufs
NympheAdultePuceron du théier (Toxoptera auranti)••••

Puceron du théier (Toxoptera
auranti) infestation

•
•
•
•

Symptômes : De minuscules insectes ronds noirâtres s’agrègent sur les jeunes pousses et la face inférieure desfeuilles. Souvent entretenu par des fourmis.
Dégâts : Les nymphes et les adultes percent le tissu foliaire et sucent la sève. La croissance des plants est
retardée. Une forte infestation peut faire jaunir les feuilles et les pousses et les rendre déformées ou rabougries.
Provoque généralement une infection secondaire avec de la fumagine. Vecteur de virus
Favorisé par les plants stressés, la faible fertilité du sol, la sécheresse. Manque de prédateurs naturels.
Prévention : vérifiez l’absence de pucerons sur les transplants avant de les planter ; utilisez des variétés tolérantes
si elles sont disponibles (par exemple Aa/NTRI 101 de Rupi, Aa/NTRI 117 de Chuye et Bb/NTRI 470, Bd/NTRI 180 de
Qi-men)Lutte mécanique : Si la population de pucerons est limitée à quelques feuilles ou pousses, il est possible de taillerl’infestation pour la contrôler ; les plants robustes peuvent être pulvérisées avec un fort jet d’eau pour faire
tomber les pucerons des feuilles ;Lutte biologique : Chrysopes, coccinelles, cécidomyies, punaises prédatrices, syrphes, guêpes parasites, ainsi quele champignon Metarhizium anisopliae ou Entomophtorales ssp
Lutte chimique : Huile-savon en spray ou huile de neem.
Niveau seuil : 20 % d’infestation

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SA-G-SD-9-V1

Œufs

Durée (dépend des espèces etdes conditions
environnementales)7 à 70 jours

Nymphe< 2 mois

Adulte< 5 mois

Étape

Sauterelles et locustes(Infos générales)

HabitatLocustes : sol, sauterelles : nervure médiane des feuilles
Mobiles, se nourrissent en se perchant sur des plantes, principalement lesoir

Cicadelle des grillures/Jasside/Mouche verte (Empoasca flavescens)les nymphes, en particulier, causent des dégâts en suçant la sève. Vecteur de virus••
Cicadelle des Grillures(Empoasca flavescens)

•
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•
•
•
•

Symptômes : Maladie portant le nom de « Rim Blight » : Les bords des feuilles se recourbent vers le bas,
deviennent incurvés, prennent une couleur brun violacé et sèchent. Affectant surtout les tissus des nouveauxbourgeons de théier et des pousses, en particulier dans l’entre-nœud.
Dégâts : Les sauterelles sucent la sève. Leur salive endommage les feuilles. Réduction de la photosynthèse
entraînant un retard de croissance.
Favorisés par des températures plus élevées et des schémas inversés de pluie et de sécheresse.
Prévention : Le théier modérément ombragé présente moins de problèmes de cicadelles, cependant, uneombre importante peut augmenter l’incidence. Le paillage améliore le microclimat et réduit également lespopulations de cicadelles.
Lutte mécanique : Utilisation de pièges lumineux/pièges jaunes collants
Lutte biologique : Coccinelles, chrysopes, mantes religieuses, demoiselle. Pulvérisation de Verticillium lecanii(2 g/l).
Lutte chimique : Pulvérisation de pyrèthre, huile de Neem ou un mélange d’huiles de menthol et de camphre.
Niveau seuil : 50 % (50 jassides/100 feuilles)

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ÉtapeNématodes(Infos générales)

Durée (dépend des espèces etdes conditions
environnementales)

HabitatPlusieurs semaines

Dans le sol près des racines, ou à l’intérieur du cortex des racines,
généralement hôte spécifique

kyste
œuf
Jeune
AdulteNématodes comme (Meloidogyne ssp.)••

Dégâts causés par lesnématodes sur les racines•••

Symptômes : Les racines infestées développent des galles et se ramifient abondamment.
Dégâts : Les plants gravement infectés présentent un système racinaire réduit qui entrave sérieusement leurfonction d’absorption de l’eau et des nutriments. Les plants se flétrissent pendant les périodes chaudes et sontsouvent rabougris. L’infection par les nématodes prédispose les plants aux pathogènes fongiques et bactériens
des racines.
Favorisés par une température du sol de 21 à 26 C et des sols légers.
Prévention : Ne réutilisez jamais un vieux terreau ou stérilisez à la chaleur le terreau de pépinière avant de l’utiliser.
Niveau seuil : > 6 à 7 nématodes par 10 g de sol testé

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MALADIES COURANTES DU THEIER
La plupart des maladies du théier sont causées par des champignons pathogènes et moins fréquemment par des bactéries et des virus. La
plupart des maladies du théier peuvent être évitées ou gérées grâce à de bonnes pratiques agricoles et à la gestion des plantations.
CloqueCloque (Exobasidium vexans)
Maladie fongique.
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•
Cloque (Exobasidium vexans)

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Symptômes : Infection des jeunes feuilles (moins d’un mois). De minuscules taches translucides se développent,deviennent plus grandes et deviennent brun clair. Après une semaine, la surface inférieure des feuilles
développe des cloques avec des zones imbibées d’eau autour des cloques. Après la libération des spores, lescloques deviennent blanc-brun et molles. Les feuilles affectées sont déformées — enroulées de façon
irrégulière. L’infection de la tige entraîne une forme de cou d’oie, un dépérissement et une cassure au pointd’infection.
Dégâts : Les jeunes tiges infectées se courbent et se déforment et peuvent se casser ou mourir. Pertes jusqu’à
43 %.
Favorisé par des conditions humides sous trop d’ombre ou par temps nuageux et humide. Températures entre
17 et 22 °C. Hautes altitudes >1500 m.a.s.l. et ensoleillement inférieur à 4 à 5 heures/jour. Les spores sontdispersées par le vent. Le champignon survit dans les feuilles infectées.
Prévention : ajustez le moment de la régulation de l’ombrage dans les zones sensibles avant que les conditions
ne deviennent normalement propices à l’infection de la cloque.
Lutte biologique : Ochrobactrum anthropi BMO-111 appliqué chaque semaine. Si la température est supérieureà 30 °C, traitez comme un cycle de pulvérisation de fongicide.
Lutte mécanique : Enlevez et détruisez toutes les branches affectées.
Variétés tolérantes : Le clone PS1 est très résistant à la cloque en Indonésie. GMB-1, GMB-2 et GMB-3 présentent
une certaine résistance. TV34 et TV35 sont des clones à haut rendement qui peuvent être cultivés en conditions
sèches pour réduire les maladies fongiques.
Lutte chimique : Pulvérisation de bouillie bordelaise ou d’oxychlorure de cuivre (350 g dans 67 l d’eau) en
combinaison avec du chlorure de nickel12 dans les champs taillés à 3 jours d’intervalle. Vous pouvez également
pulvériser 2 à 3 fois par quinzaine des extraits aqueux à 5-10 % de Cassia alata/Polygonum hamiltoni/Acorus
calamus/Adhatoda vasica/Equisetum arvense/Polygonum hydropiper/Tagetis petula.
Niveau seuil : 25 à 35 % de plants infectés. La lutte biologique et la lutte mécanique doivent commencer dès lespremiers signes d’infection.

12 À utiliser en dernier recours

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Maladie des taches grises et anthracnose (Pestalotiopsis theae et Colletotrichum camellia)
Maladie fongique.
•••
Maladie des taches grises(Pestalotiopsis theae)•••

Symptômes : Les lésions foliaires nécrotiques rondes, irrégulières, grises ou brunes se développent à partir desjeunes feuilles. Les feuilles présentent aussi souvent un certain jaunissement. Plus tard, des spores noires
deviennent visibles.
Dégâts : Chute des feuilles conduisant à la défoliation. Baisse de rendement entraînant une perte de récolte de~17 %.
Favorisée par la récolte par cisaillement ou par effeuillage, pendant la saison des pluies. S’attaquent surtout
aux théiers faibles ou endommagés. Infection secondaire après une lutte inadéquate contre la cloque.
Prévention : Évitez le stress des plants. Un espacement adéquat pour permettre une circulation d’air suffisanteet réduire l’humidité et la durée de mouillage des feuilles. Utilisation de variétés résistantes, telles que IRB88-15
de la variété Yakubita (Japon), CP-1 et TV-26 en Asie du Sud-Est, et 31/11 et 303/199 en Afrique (Kenya).
Lutte chimique : Fongicides. Vous pouvez également pulvériser 2 à 4 fois par quinzaine des extraits aqueux à 5 %d’Amphineuron opulentum/Cassia alata/Polygonum sinensis.
Niveau seuil : 35 % de plants infectés

Anthracnose (Colletotrichum ssp)

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Pourriture noire, brûlure du fil (Corticium/Pellicularia koleroga, C. invisum)
Maladie fongique qui touche également le caféier, le poivre noir, le capsicum, les agrumes, le gingembre et l’acajou.
Causée par ces deux champignons. Plus répandue dans les plaines que dans les collines••••

Des filaments blancs duchampignon
Pellicularia koleroga sur la faceinférieure d’une feuille de caféier

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•

Symptômes : Les feuilles et les rameaux deviennent bruns avec un tapis de fils fongiques blancs sur la faceinférieure des feuilles. Les feuilles mortes sont suspendues aux branches par de minces fils.
Dégâts : Défoliation aiguë.
Favorisée par les conditions humides et chaudes
Prévention : En ne cueillant le théier que par temps sec, on évite la transmission de maladies. Cueillez
régulièrement. Améliorez l’aération et le drainage.
Lutte mécanique : Élaguez et brûlez les pousses affectées à au moins 30 cm sous la zone affectée.
Lutte biologique : C. invisum peut être traité avec la bactérie Bacillus subtilis.
Lutte chimique : Les nouvelles pousses sont protégées par des pulvérisations de cuivre ou de fongicides.
Niveau seuil : Lutte mécanique immédiate. Lutte chimique à 35 % d’arbres infectés.

Pourriture noire des racines (voir la fin du document pour plus d’informations) (Rosellinia arcuata)
Maladie fongique
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Pourriture noire des racines(Rosellinia arcuata)•

Symptômes : Mycélium noir sur les racines infectées, mycélium blanc en forme d’étoile entre l’écorce et le bois.
Un anneau de tissu gonflé se développe au-dessus de la zone morte et entoure la tige.
Dégâts : Une infection à 60-90 % et peut causer environ 27 % de perte de rendement et une infection à plus de
90 % peut provoquer 36 % de perte de rendement.
Favorisée par une forte humidité et la saturation en eau des sols (généralement pendant la saison des pluies).
Prévention : Évitez la saturation en eau. Après la taille et l’élagage, éliminez toujours le matériel malade.
Lutte mécanique ; creusez une tranchée autour des buissons atteints pour assécher le sol et empêcher lapropagation du mycélium. Dans les cas graves, enlevez et détruisez les buissons infectés.
Lutte biologique : Trichoderma sp. et Gliocladium virens appliqués dans les fosses de plantation pour laprévention des maladies des racines.
Lutte chimique : Arrosage du sol avec des fongicides. Utilisation de pesticides synthétiques approuvés
localement uniquement en dernier recours. Avant de procéder à l’application d’insecticides, consultez toujours
la liste des insecticides interdits et la liste d’atténuation des risques de l’Annexe 7 de la norme 2020 de Rainforest
Alliance.
Niveau seuil : Chaque arbre infecté doit être traité immédiatement.

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SA-G-SD-9-V1

Pourriture rouge des racines (Poria hypolateritia)
Maladie fongique qui affecte également le caféier, le Grevillea, l’Albizia et l’Érythrina.
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Pourriture rouge des racines (Poria
hypolateritia)••

Symptômes : Le mycélium blanc devient ensuite rouge sang sur les racines infectées et se développeégalement dans le sol.
Dégâts : Se propage rapidement, tuant lentement les buissons. Jaunissement et flétrissement du feuillage ; mort
soudaine d’une partie duplant ; les feuilles flétries restent attachées au plant pendant plusieurs jours.
Favorisée par une plantation rapprochée, car la propagation se fait de racine en racine.
Prévention : Augmentez le drainage du sol et évitez un espacement trop étroit.
Lutte biologique : Trichoderma sp. et Gliocladium virens appliqués dans les fosses de plantation pour laprévention des maladies des racines. Arrosages du sol avec des champignons du genre Cunninghamella.
Streptomyces griseus et Streptomyces lydicus
Lutte mécanique : Déracinez et brûlez les buissons infectés, y compris toutes les racines.
Niveau seuil : Chaque plant infecté doit être déraciné immédiatement. La zone environnante doit être traitée
et réhabilitée avant la replantation.

Pourriture brune des racines (Fomes lamaensis/noxius/Phellinus noxius)
Maladie fongique qui affecte également le caféier, le Grevillea, l’Albizia et l’Érythrina.
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Pourriture des racines causée parla pourriture brune des racines(Fomes noxius)

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Symptômes : Un réseau de mycélium brun apparaît sous l’écorce. Les racines infectées deviennent molles etspongieuses.
Dégâts : Se propageant lentement, tuant rapidement les buissons.
Favorisée par les basses altitudes. Plantation rapprochée.
Prévention : Évitez les plantations trop rapprochées, car l’infection se propage de racine en racine.
Lutte mécanique : Déracinez et éliminez complètement les buissons affectés.
Lutte biologique : Trichoderma sp. et Gliocladium virens appliqués dans les fosses de plantation pour laprévention des maladies des racines.
Niveau seuil : Chaque buisson infecté doit être traité individuellement.

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SA-G-SD-9-V1

Flétrissement causé par lapourriture brune
Des racines (Fomes noxius/Formes
lamaoensis)

Chancre des tiges (Macrophoma theicola)
Maladie fongique
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Chancre des tiges (Macrophoma
theicola)••

Symptômes : Les premiers symptômes sont le brunissement et l’affaissement des feuilles touchées. Lorsque lamaladie se propage dans les pousses, celles-ci deviennent sèches et meurent.
Dégâts : La branche entière peut mourir de l’extrémité vers le bas. Les branches mortes présentent des lésions
peu profondes, qui s’étendent lentement, entourées d’une zone d’écorce épaissie.
Favorisé par une plantation trop profonde et la saturation en eau des sols.
Prévention : Plantez dans des sols bien drainés et acides.
Lutte biologique : Trichoderma harzianum et Gliocladium virens, appliqués à la fois sur le sol autour du buisson etutilisés pour le pansement des blessures.
Lutte mécanique : Enlevez les rameaux malades en coupant plusieurs pouces sous les zones chancreuses et enles désinfectant.
Lutte chimique : Pulvérisez des fongicides de protection appropriés pendant les périodes de temps humide ou
de chute naturelle des feuilles pour protéger les cicatrices foliaires de l’infection. Utilisation de pesticides
synthétiques approuvés localement uniquement en dernier recours. Avant de procéder à l’applicationd’insecticides, consultez toujours la liste des insecticides interdits et la liste d’atténuation des risques del’Annexe 7 de la norme 2020 de Rainforest Alliance.
Niveau seuil : Chaque buisson infecté doit être traité individuellement.

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SA-G-SD-9-V1

Dépérissement des rameauxcausé par Macrophoma theicola

Rouille (Cephaleurus parasiticus, C. virescens)
Une algue pathogène des théiers.
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Rouille ou rouille rouge(Cephaleurus parasiticus)•••

Symptômes : Auréoles de couleur rouge rouille couvrant les feuilles et les branches
Dégâts : Perte de récolte de >20 %Favorisée par une faible fertilité du sol. Commence avec l’arrivée des pluies.
Prévention : Assurez une fertilisation suffisante en azote et en potassium. Évitez la saturation en eau. Améliorez lacirculation de l’air entre les buissons.
Clones partiellement résistants : (0-10 % de susceptibilité), comme TV-17, TV-23, TV-24, TV-25, TV-26 et TV27. Évitez
les jats d’Assam à feuilles larges.
Lutte biologique : Bactéries Streptomyces sannanensis ou Streptomyces griseus.
Lutte chimique : Pulvérisation de fongicides systémiques. Alternativement, pulvérisez 4-6 séries d’extraits aqueuxà 5 % d’Argimone maxicana/Polygonum hemiltonii à 15 jours d’intervalle.
Niveau seuil : 30 % de feuilles infectées.

Maladie rose (Corticium salmonicolor syn. C salmonicolor)
Maladie fongique.
••••

Symptômes : La présence d’une toile d’araignée représente souvent un signe d’alerte précoce. Suivi del’apparition de taches de couleur saumon qui se transforment en un tapis lisse de champignons vers l’extrémité
des brindilles et des branches ombragées.
Dégâts : La partie située au-dessus du foyer meurt et provoque un dépérissement.
Favorisée par les conditions humides et chaudes.
Prévention : Évitez la surcharge en taillant régulièrement. Les plantations très rapprochées sont à éviter. Le
maintien d’une croissance saine et vigoureuse des plants réduit l’incidence des maladies.

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Maladie rose (Erythricium ssp.)•••

Lutte mécanique : Améliorez l’espacement pour permettre la libre circulation de l’air. Taillez et détruisez lesbranches infectées bien en dessous des zones affectées.
Lutte chimique : application de fongicides à base de cuivre directement sur la tige principale et les parties
ligneuses des branches. Utilisation de pesticides synthétiques approuvés localement uniquement en dernierrecours. Avant de procéder à l’application d’insecticides, consultez toujours la liste des insecticides interdits etla liste d’atténuation des risques de l’Annexe 7 de la norme 2020 de Rainforest Alliance.
Niveau seuil : Chaque buisson infecté doit être traité individuellement.

Croûte de la maladie rose
(Corticium salmonicolor) sur une
branche morte

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INFORMATIONS SUPPLEMENTAIRES SUR LES MALADIES DES RACINES
Primaire
1. Pourriture des souches de charbon (Ustulina zonata)
2. Pourriture rouge des racines (Poria hypolateritia)
3. Pourriture brune des racines (Fomes lamaensis/noxius)
4. Pourriture goudronneuse des racines (Hypoxylon asarcodes)
5. Pourriture pourpre des racines (Helicobasidum compactum Boedijn)
6. Pourriture noire des racines (Rosellinia arcuate)
7. Armillaria (Armillaria mellea) en Afrique. Déracinez les buissons affectés avec toutes lesracines et retirez les radicelles dans un sac du champ et brûlez-les. Lorsque le terrain est
préparé pour la plantation, veillez à ce que toutes les racines des arbres/arbustes retiréssoient extraites du sol et emportées pour être brûlées. Les arbres qui doivent être enlevés
doivent être écorcés pour s’assurer que leurs réserves d’amidon sont épuisées, car lechampignon ne pourra pas vivre longtemps sur les radicelles laissées par erreur.
Secondaire
1. Pourriture violette des racines (sphaerostilbe repens)
2. Brûlure des épines (Aglaospora.sp)
Ressources
Application de Rainforest Alliance sur les pesticides et leurs alternatives :https://play.google.com/store/apps/details?id=org.ipmcoalition.pesticidealternatives
https://apps.apple.com/app/id1461460997#?platform=iphone
Références
Une liste de clones sri-lankais recommandés pour différentes altitudes et leur résistance aux
ravageurs est disponible ici :https://www.tri.lk/userfiles/file/Advisory_Circulars/TRI_Advisory_Ciculars_PN_01.pdf
Une liste exhaustive des ravageurs et des maladies du théier en Inde peut être consultée ici :http://www.upasitearesearch.org/pests-and-diseases/
Un manuel complet d’AESA pour les cultivateurs de théier est disponible ici :https://niphm.gov.in/IPMPackages/Tea.pdf
Der Tropenlandwirt (Journal of Agriculture in the Tropics and Subtropics) 101 (avril 2000) pp.
13-38 fournit des descriptions de nombreux facteurs conduisant à des infestations demaladies et de ravageurs.
Crédits photo
Mick Talbot [CC BY 2.0], via Wikimedia Commons
Keith, l., Ko, W.H et Sato D.M. 2006. Identification Guide for Diseases of Tea (Camellia sinensis). Plant Disease, 33, pp-1-4.
Ravi Pujari
Directorate of Plant Protection Quarantine and Storage; N. H. IV, Faridabad, Haryana
National Institute of Plant Health Management; Rajendranagar, Hyderabad,
Department of agriculture and cooperation; ministry of agriculture government of India
https://www.revolvy.com/page/Corticium
J. Erikss. & Hjortstam
Nagesh, I. University of Horticultural Sciences, Bagalkot College of Horticulture
Biswapriya Misra, University Sains Malaysia
Centre for e-Learning, Kerala Agricultural University, KAU Agri Infotech Portal
Kohler F, Pellegrin F, Jackson G, McKenzie E (1997) Diseases of cultivated crops in Pacific Island countries. South Pacific Commission. Pirie Printers Pty Limited,
Canberra, Australie.
Prof. Dr S A Samad, Dept of Microbiology and Biotechnology, GNIPST, Calcutta, India
Jürgen Kranz - http://ecoport.org/ep?SearchType=pdb&PdbID=20164, EcoPort
Shutterstock, Leong9655, Malaysia
http://eagri.org, Université agricole du Tamil Nadu
Ryan Brookes, http://insecta.pro
Agritech Portal: Crop Protection, Tamil Nadu Agricultural University (TNAU)
Kyoto Prefecture via Ricardo Caicedo
Bettman, https://www.inaturalist.org/taxa/124755-Endromidae
Takashi Shinkai, Minden Pictures
Nan Jiang, Dayong Xue, Hongxiang Han - A review of Biston Leach, 1815
Satyajit Sarkar, S. E. Kabir, Department of Tea Science, University of North Bengal
www.vikaspedia.gov.in
S. Bambara
Ravi Pujari70
SA-G-SD-9-V1

Mendel et al, 2012a ; Rabaglia et al. 2006 ; UCR_Eskalen Lab. Riverside

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CONSEILS SPECIFIQUES AU CACAOYER
Clause de non-responsabilité
Ce document d’orientation sur la PIC spécifique aux cultures n’entend pas couvrir tous lesravageurs par culture. L’objectif est de présenter les ravageurs/maladies les plus courants qui
affectent certaines cultures dans plusieurs régions du monde.

Informations générales
Recommandations relatives au cacaoyer (Theobroma cacao)
Choix d’un site adéquat
pour la culture

Conditionsdecroissancealtitudetempérature

précipitations

humidité

Choix des variétés et dumatériel végétal adaptés
au siteMaintien de la fertilité etde la santé des sols

Pour réussir la culture du cacaoyer, il faut peu deprécipitations, tout au long de l’année, sinon l’irrigation sera
nécessaire. Le cacaoyer est généralement cultivé sous uneforêt résiduelle, sous des arbres d’ombrage plantés ou en
culture intercalaire avec d’autres cultures commerciales qui
donnent au cacao suffisamment d’ombre et de protection
contre le vent, surtout pendant les 5 premières années dedéveloppement.
< 1200 m.a.s.l.
Température : outre les précipitations, c’est l’un des facteurs
climatiques les plus critiques pour la croissance et ledéveloppement du cacaoyer. Moyenne journalière
optimale : 24°C.
min. 15 C ; max. 35 °C, mais la fluctuation réduit lerendement.
1500 à 2000 mm par an distribuées de manière homogène.
Les périodes de sécheresse (avec <100 mm/mois) ne
devraient pas dépasser 3 mois. Sinon, il est nécessaire demettre en place un système d’irrigation.
80 % à 100 %Une atmosphère chaude et humide est essentielle pour ledéveloppement optimal des cacaoyers.
Il convient de privilégier les variétés/hybrides résistantes à lasécheresse et aux maladies et approuvées par l’autorité
compétente locale ou nationale lorsque cela est possible,
comme l’UF-18 (homologué par le Conseil national del’industrie des semences aux Philippines).
Utilisez du matériel de plantation de bonne qualité etexempt de maladies, ainsi que des plants vigoureux et sains
provenant de pépinières certifiées authentiques ou
réputées. Semis, bourgeons ou greffons âgés de 4 à 6 mois.
Il convient d’utiliser des variétés exemptes de maladies, àhaut rendement, résistantes à la sécheresse et approuvées
par l’autorité compétente locale ou nationale.
Comme le cacaoyer a une racine pivotante de 1,5 m delong, un sol profond et friable, exempt d’aspérités, estnécessaire pour réussir la culture des cacaoyers.
La fourchette de pH idéale se situe entre 6,5 et 7,0.
Pour chaque tonne de grains secs récoltés, 25kg N, 4-10 kg
P, 40-60 kg K, 8-11 kg Mg et 5-9 kg Ca doivent êtreréapprovisionnés annuellement par hectare.
(Pour plus de détails, veuillez vous reporter au document d’orientation surles sols.)

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Maintien de niveauxadéquats de matièreorganique du sol (MOS)

Maintien de latempérature et del’humidité du sol

Maintien de niveauxd’ombrage adéquats

Principaux parasites etmaladies du cacaoyer par
régionLe cacaoyer est sensible à la sécheresse ainsi qu’à lasaturation en eau, c’est pourquoi une teneur élevée en
matière organique du sol est indispensable (> 3 %). Unequantité suffisante de MOS assure un drainage adéquat
ainsi que la rétention d’eau et maintient les niveaux demicro-organismes bénéfiques. Comme le cacaoyer est
souvent établi sur des sols forestiers précédemment
défrichés, les niveaux de MOS diminuent généralement
rapidement s’ils ne sont pas reconstitués par des ajouts
fréquents de fumier animal ou de compost ou de paillage.
Des cultures de couverture appropriées peuvent égalementêtre utilisées, si la matière organique reste en tant que
couverture de paillage dans la plantation.
La création d’un microclimat dans la plantation qui soit
favorable au cacaoyer et défavorable aux ravageurs et
aux maladies peut être un facteur de prévention essentiel
ou du moins réduire la gravité d’une épidémie. Ceci est
particulièrement important pendant les saisons
exceptionnellement sèches et chaudes, qui peuvent êtreplus fréquentes en raison du changement climatique. Pour yparvenir, il convient de mettre en place des niveauxd’ombrage adéquats, mais aussi une couverture du sol sous
forme de paillis ou de cultures de couverture (pendant les
5 premières années). Le paillis reste à distance de la base duplant pour réduire le risque de maladie. Le paillis est replacéà la fin de chaque saison pluvieuse.
L’ombre protège les jeunes cacaoyers du stress de lasécheresse et de l’exposition au soleil. Il est recommandéd’avoir diverses espèces d’arbres offrant des niveauxd’ombrage de 30 à 50 %. Les niveaux d’ombrage peuvent
atteindre 70 % pour les jeunes cacaoyers et, à mesure que
les cacaoyers grandissent et commencent à s’ombrager
eux-mêmes, le nombre d’autres arbres d’ombrage peut êtreréduit progressivement. Les aménagements agroforestiers
qui fournissent plusieurs couches d’ombre différentes
peuvent cependant être avantageux pour une plus grande
biodiversité et un microclimat favorable.
Afrique de l’Ouest : Cosse noire (principalement
Phytophthora megakarya),
Virus du Swollen Shoot du cacaoyer (Badnavirus), mirides(Sahlbergella singularis et Distantiella theobroma)
Amérique du Sud : Balai de sorcière (répandu jusqu’auPanama) (Moniliophthora perniciosa), pourriture givrée descabosses (sauf au Brésil) (Moniliophthora roeri), cosse noire(principalement Phytophthora palmivora, P. capsici), mirides
Méso-Amérique : Pourriture givrée des cabosses(Moniliophthora roreri), cosse noire (Phytophthorapalmivora), mirides
Asie du Sud-Est : Dépérissement des stries vasculaires(Oncobasidium theobromae), teigne javanaise ducacaoyer (Conopomorpha cramerella), mirides (Helopeltisspp.)13

L’application mobile gratuite « HabitApp » permet d’obtenir une lecture instantanée ducouvert d’ombrage sur le cacaoyer. Elle peut être téléchargée via le lien suivant : HabitApp— Apps sur Google Play
13 Source: ICCO (2015), http://www.icco.org/about-cocoa/pest-a-diseases.html.

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RAVAGEURS COURANTS DU CACAOYER
Légende :Type de ravageur

Punaises du thé(Informations générales)

Stades de vie du ravageur qui causent des dommages
Stades de vie du ravageur qui ne causent PAS de dommages

Étape

Durée (dépend des espèces etdes conditions
environnementales)

HabitatŒufs5 à 26 jours

S’insère dans le tissu végétal d’un plant hôte

Nymphe10 à 30 jours

Les jeunes nymphes s’agrègent souvent

AdulteVariéeMobile, souvent spécifique à un hôte, mais se cache également
dans les crevasses de l’écorce, les structures, etc.

Punaise du thé (Helopeltis antonii)

Dégâts causés par la punaise du thé

Punaises du thé (Helopeltis antonii)
Insectes minces de couleur brun rougeâtre, <10 mm de long avec des antennes qui sont presque deux fois plus longues que le corps.
•••

Symptômes : Les cabosses infestées développent des taches circulaires imbibées d’eau causées par de multiples blessures dues àl’alimentation. Ces perforations deviennent ensuite noires. Les cabosses apparaissent déformées et cicatrisées.
Dégâts : Les œufs sont insérés dans les tissus mous près des extrémités des pousses fleuries ou végétatives ainsi que des fruits en développement.
Les dégâts dus à l’alimentation se manifestent par des lésions décolorées. Les fortes infestations entraînent des malformations des cabosses etune chute prématurée. Les agents pathogènes des maladies secondaires peuvent pénétrer par les tissus végétaux endommagés. Les fruits
tombés attirent les ravageurs.
Favorisée par : La saison des pluies ou des précipitations irrégulières entraînant la poussée des jeunes pousses. Les populations se développent
généralement pendant les saisons humides et ensoleillées. Températures > 28 °C.

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Prévention : Une surveillance régulière, car les attaques sont soudaines. Conservez les nombreux ennemis naturels comme les fourmis
tisserandes. Ne faites pas de cultures intercalaires avec des plants hôtes alternatifs comme la noix de cajou, le thé, la patate douce, la goyave,
le coton et la mangue. Gardez une bonne gestion des plantations en ce qui concerne l’élagage, le désherbage et l’ombrage.
Lutte biologique : Parasitoïdes : Telenomus ssp, Chaetostricha sp, Erythmelus helopeltidis. Prédateurs : Panthous bimaculatus, Sycanus collaris,
Rihirbus trochantericus luteous, Chrysoperla sp ; entomopathogène : Beauveria bassiana
Lutte chimique : Utilisation de pesticides synthétiques approuvés localement uniquement en dernier recours. Avant de procéder à l’applicationd’insecticides, consultez toujours la liste des insecticides interdits et la liste d’atténuation des risques de l’Annexe 7 de la norme 2020 deRainforest Alliance.
Niveau seuil : Niveau de dommage de 1 à 5 %Sahlbergella singularis

Distantiella Theobroma

Dépérissement d’un jeune arbre causé par les dégâts dumiride.

Miride du cacaoyer (Sahlbergella singularis) ou (Distantiella theobroma)••••

Symptômes : les nymphes et les adultes du miride percent la surface des tiges, des branches et des cabosses du cacaoyer pour sucer la sève,
provoquant des lésions nécrotiques.
Dégâts : peut entraîner la mort des feuilles terminales et des branches, provoquant un dépérissement. Des jeunes arbres entiers peuvent mourir.
Les mirides sont des vecteurs d’infections fongiques (Calonectria rigidiuscula, etc.) qui peuvent provoquer le dépérissement du cacaoyer.
Favorisés par les arbres exposés au soleil, les arbres portant la première poussée fraîche de feuilles, les pousses et les cabosses. Les populations
se développent généralement pendant les saisons humides et ensoleillées. Températures > 28 °C.
Prévention : L’ombrage doit être conçu pour atteindre un équilibre entre la lutte contre les mirides, la floraison et la gestion de la cosse noire.
Les hôtes alternatifs ne doivent pas être utilisés comme arbres d’ombrage dans les exploitations cacaoyères. Le choix du moment desinterventions est crucial pour réussir à lutter contre ce ravageur. Renseignez-vous sur les conditions météorologiques auprès des groupes

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d’agriculteurs ou des agents de vulgarisation. Les populations commencent généralement à se constituer à partir du mois de juin déjà et lerepérage/suivi devrait commencer à ce moment-là.
Certains nouveaux clones semblent être moins attrayants pour les punaises mirides. Au Ghana par exemple, les hybrides (communément
appelés mixtes) provenant des jardins de semences autorisés par le COCOBOD, sont connus pour avoir une certaine tolérance aux mirides. Le
CIRAD a identifié quelques génotypes résistants en Guyane française. Comme les mirides pondent leurs œufs dans l’écorce des tiges ou àl’intérieur des cabosses, peindre les tiges avec de la chaux pour couvrir les crevasses et ramasser toutes les cabosses pourrait aider à réduire lestaux d’infestation.
Lutte biologique : La fourmi noire (Dolichoderus thoracicus) a été utilisée dans certaines exploitations comme mesure de lutte. Maintiend’abondantes colonies de fourmis tisserandes (Oecophylla longinoda) dans la plantation
Lutte chimique : La résistance aux insecticides couramment utilisés devient de plus en plus un problème dans la lutte contre le miride. Par
conséquent, l’utilisation de pesticides synthétiques approuvés localement ne doit être envisagée qu’en dernier recours. Avant de procéder àl’application d’insecticides, consultez toujours la liste des insecticides interdits et la liste d’atténuation des risques de l’Annexe 7 de la norme
2020 de Rainforest Alliance. Les pulvérisations sont plus efficaces de septembre à mai.
Niveau seuil : Des pièges collants et des pièges à phéromones peuvent être utilisés pour le suivi. 1 à 4 mirides par arbre
Punaises vertes (Bathycoelia thalassina)
utilisent de longues pièces buccales pour pénétrer à travers l’enveloppe de la cabosse et aspirer le contenu desgrains.
•••••Punaises vertes (Bathycoelia
thalassina) sur une cabosse decacaoyer avec des dégâts causés parle miride.

••

Symptômes : Les punaises vertes ne laissent pas de marques d’alimentation sur les cabosses, mais provoquentun mûrissement prématuré des cabosses. Les cabosses jaunissent, les chérelles sont déformées.
Dégâts : La perte de cabosses entraîne une réduction du rendement. Attaquez également les nouvelles
poussées et les chupons.
Prévention : Maintenez des niveaux d’ombre et de canopée suffisants. Si les punaises sont un ravageur
important dans la région, évitez d’utiliser des arbres hôtes alternatifs comme : les manguiers (Mangifera
indica), le kola (Cola acuminata), et les Citrus spp comme arbres d’ombrage. Enlevez fréquemment leschupons, car ils attirent les punaises vertes et servent également de sites de ponte.
Lutte biologique : Libérez des espèces de guêpes parasites (Hymenoptera) ou de mouches tachinides. La
recherche sur d’autres espèces de punaises vertes montre que les pièges à appât à phéromone placés sur lesol donnent de bons résultats.
Lutte chimique : Pyréthroïdes pulvérisés dans les zones localisées infestées. Sinon, les applications d’insecticides
doivent être réduites au minimum afin de maintenir des populations d’ennemis naturels à un niveau sain.
L’utilisation de pesticides synthétiques approuvés localement ne doit être envisagée qu’en dernier recours.
Avant de procéder à l’application d’insecticides, consultez toujours la liste des insecticides interdits et la listed’atténuation des risques de l’Annexe 7 de la norme 2020 de Rainforest Alliance.
Niveau seuil :10 % de cabosses prématurément immatures ou un total de 25 punaises sur 10 arbres exposés ausoleil.
Surveillez les pics de population de mars à juin et d’août à septembre.

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Cabosse de cacaoyer immature mûrie
prématurément à cause des dégâts
de la punaise verte (Bathycoelia
thalassina).

œufs

Durée (dépend des espèces etdes conditions
environnementales)
1 semaine

nymphe1 à 2 mois

adulteLa femelle meurt après la
ponte

Étape

Cochenilles farineuses(Informations générales)

Planococcus lilacinus

Paracoccus marginatus

HabitatDans un sac collant à l’aisselle des tiges ou des feuilles
Larves mobiles
Les mâles sont mobiles avec des ailes. Les femelles sont sessiles
sur les pousses, les aisselles des feuilles et les nervures médianes
ou les racines.

Rastrococcus iceryoides

Cochenilles farineuses (Planococcus lilacinus, Planococcus citri, Paracoccus marginatus, Drosicha mangiferae, Planococcoides jalensis,
et Rastrococcus iceryoides)

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Symptômes : Les cochenilles farineuses colonisent les parties tendres du plant ainsi que les cabosses matures, qui semblent couvertes de taches
blanches duveteuses.
Dégâts : L’alimentation des cochenilles induit le flétrissement des chérelles. Vecteur du virus du Swollen Shoot du cacaoyer (CSSV) et d’autres
maladies virales.
Favorisées par la présence de fourmis Philidris, des conditions chaudes et sèches, la fertilisation azotée excessive.
Prévention : Lutte contre les fourmis. Empêchez les fourmis Philidris de grimper dans l’arbre en plaçant une bande collante autour du tronc. Cela
aidera les ennemis naturels (guêpes parasites et chrysopes). Les oiseaux jouent un rôle important dans la réduction des populations decochenilles farineuses.
Lutte biologique : La meilleure lutte s’effectue à l’aide de la coccinelle prédatrice Crytolaemus montrouzieri, dont les nymphes ressemblent àcelles de la cochenille farineuse. Taux de libération recommandé : 5 coléoptères/cacaoyer infesté. En Inde, la chenille de Spalgis epeus, qui
ressemble aussi à une cochenille farineuse, est le prédateur le plus commun de la cochenille farineuse. Les prédateurs qui ressemblent aux
cochenilles farineuses peuvent être différenciés de leurs proies par leur grande mobilité, alors que les cochenilles farineuses sont immobiles.
Lutte chimique : Arbre à savon d’Inde (Sapindus Mukorossi aussi appelé Savonnir d’Inde) ces noix trempées pendant 48 heures produisent dusavon qui a également des propriétés insecticides. Ainsi, cette association avec le Neem/Pongamia pinatta fonctionne bien contre lescochenilles et les cochenilles farineuses.
Utilisation de pesticides synthétiques approuvés localement uniquement en dernier recours. Avant de procéder à l’application d’insecticides,
consultez toujours la liste des insecticides interdits et la liste d’atténuation des risques de l’Annexe 7 de la norme 2020 de Rainforest Alliance.
Niveau seuil : Les arbres infestés peuvent être traités individuellement par des applications sélectives. La pulvérisation est recommandée si 5 %des arbres sont touchés au stade de la nouaison.

Œufs

Durée (dépend des espèces etdes conditions
environnementales)7 à 70 jours

Nymphe< 2 mois

Étape
Sauterelles et locustes(Infos générales)

HabitatLocustes : sol, sauterelles : nervure médiane des feuilles
Mobiles, se nourrissent en se perchant sur des plantes, principalement
le soir

Adulte< 5 mois
Cicadelles pruineuses plusieurs Flatidae spp.
Ravageur important en Asie et dans la région du Pacifique.
••
Nymphes de cicadelles pruineuses(Melormenis basalis)•

Dégâts : Les nymphes et les adultes sucent la sève des fleurs, des pousses tendres et des cabosses. Ils excrètent dumiellat, ce qui entraîne le développement de fumagine sur les feuilles et les cabosses. Ils peuvent également êtredes vecteurs de virus et de maladies.
Favorisés par des schémas inversés de pluie et de sécheresse. Les populations s’accumulent pendant les saisons
à faible ensoleillement.
Prévention : Les arbres cultivés à l’ombre présentent moins de problèmes de cicadelles. Le paillage améliore lemicroclimat et réduit également les populations de cicadelles.

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Lutte mécanique : Utilisez des pièges lumineux
Lutte biologique : Coccinelles, chrysopes, mantes religieuses. Pulvérisation de Verticillium lecanii (2 g/l).
Lutte chimique : Pulvérisation de pyrèthre, huile de Neem ou un mélange d’huiles de menthol et de camphre.
Utilisation de pesticides synthétiques approuvés localement uniquement en dernier recours. Avant de procéder àl’application d’insecticides, consultez toujours la liste des insecticides interdits et la liste d’atténuation des risquesde l’Annexe 7 de la norme 2020 de Rainforest Alliance.
Niveau seuil : 5 % des arbres touchés au stade de la nouaison.

Cicadelle pruineuse adulte(Metcalfa pruinosa)

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ÉtapePuceronsDurée (dépend des espèces etdes conditions
environnementales)

HabitatCycle de vie de 10 à 14 jours

Dessous des feuilles, jeunes pousses, branches vertesŒuf
NympheAdulteToxoptera aurantii sur les jeunes feuilles et pendant la
floraison

Aphis gossypii sur la face inférieure d’une feuille

Pucerons (Toxoptera aurantii et Aphis gossypii)
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Symptômes : Les pucerons forment des colonies sur la face inférieure des feuilles tendres, la tige succulente, les boutons floraux et les petites
chérelles.
Dégâts : les nymphes et les adultes percent les tissus des feuilles et sucent la sève. La croissance des plants est retardée. Vecteur de virus. Perteprématurée des fleurs et enroulement des feuilles.
Interviennent généralement pendant les étés chauds et après la saison des pluies. Favorisés par les plants stressés, l’absence de prédateurs
naturels.
Prévention : améliorez la gestion des plantations pour éviter le stress des plants, en particulier le microclimat et les niveaux de MOS pour assurer
un apport suffisant en nutriments et en eau. Mettez en place des zones avec des plantes hôtes à fleurs pour attirer les populations deprédateurs à long terme.
Lutte mécanique : Si la population de pucerons est limitée à quelques feuilles ou pousses, il est possible de tailler l’infestation pour la contrôler ;les plants robustes peuvent être pulvérisés avec un fort jet d’eau pour faire tomber les pucerons des feuilles ;Lutte biologique : Chrysopes, coccinelles, cécidomyies, punaises prédatrices, syrphes, guêpes parasites, ainsi que le champignon Metarhizium
anisopliae ou Entomophtorales ssp
Lutte chimique : Huile-savon en spray ou huile de neem. Utilisation de pesticides synthétiques approuvés localement uniquement en dernierrecours.
Niveau seuil : 20 % d’infestation

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Œuf

Durée (dépend des espèces
et des conditions
environnementales)1 à 3 semainesLarve

3 à 4 semaines

Se nourrit sur ou dans les tissus du plant hôtePupe

1 à 2 semaines

Suspendus au plant hôte ou enroulés dans une feuille. Certaines se nymphosent dans le sol.

Adulte< 1 mois

Ailes mobiles

Étape

Papillons de nuit etpapillons de jour
(Infos générales)

Défoliation par les chenilles
veluesPericallia ricini adulte

HabitatÀ la surface ou s’insère dans le plant hôte

Chenille velue typique (Eupterote Testacea)

Chenilles (Lymantriya sp., Euproctis sp., Dasychira sp. Pericallia ricini, Spilosoma obliqua, Metanastria hyrtaca, Hyposidra talaca, Parasa lepida)
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Dégâts : graves dégâts foliaires sur les semis et les jeunes arbres. Feuilles décharnées
Favorisés par des saisons sèches/pluvieuses inversées.
Prévention : Maintenez des niveaux élevés de biodiversité pour fournir des sources de nourriture alternatives aux chenilles ainsi qu’un grand nombred’ennemis naturels. Inspectez régulièrement les plants et éliminez les premières colonies avant que les dégâts ne deviennent incontrôlables.
Lutte biologique : Bactérie entomopathogène Bacillus thuringensis (Bt) ; punaises prédatrices comme Macrolophus pygmaeus ou Nesidiocoris tenuis ;guêpes parasites (Trichogramma ssp.)
Lutte chimique : Huile de neem ou produits à base de pyrèthre. Dans le pire des cas : pulvérisation foliaire d’acéphate à 2 g/litre ciblée uniquement sur
partie infestée du plant.
Avertissement : cet insecticide figure sur la liste d’atténuation des risques de RA et doit être utilisé dans le cadre d’un programme de PIC et en suivant lmesures d’atténuation des risques expliquées à l’Annexe 7. Utilisation de pesticides synthétiques approuvés localement uniquement en dernier recours.
Avant de procéder à l’application d’insecticides, consultez toujours la liste des insecticides interdits et la liste d’atténuation des risques de l’Annexe 7 denorme 2020 de Rainforest Alliance.
Niveau seuil : 10 % des arbres touchés

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CPB camouflée (Conopomorpha cramerella)sous une branche horizontale

Dégâts internes de la CPB (Conopomorphacramerella)
Dégâts de la CPB (Characoma stictigrapta)

Teigne javanaise du cacaoyer/CPB (Characoma stictigrapta, Conopomorpha cramerella)
Les teignes javanaises sont d’importants ravageurs du cacaoyer. Characoma stictigrapta est présent en Afrique de l’Ouest.
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Dégâts : La CPB attaque les cabosses à tous les stades de maturité. Les cabosses infestées mûrissent de manière inégale et prématurée. Les larves deteignes javanaises percent des trous dans les cabossent de toutes tailles, produisant une masse de poudre maintenue par de la soie à l’entrée des troul’infestation se produit pendant le stade de la chérelle, elle se fane. L’infestation à un stade précoce entraîne de lourdes pertes, car la quantité et la qudu grain sont sérieusement affectées.
Favorisée par des sols mal drainés et une mauvaise gestion des plantations.
Prévention : Ajustez le niveau d’ombrage et améliorez l’aération par un espacement ou une taille et un élagage appropriés. Améliorez le drainage dunécessaire. Récoltez et éliminez complètement et régulièrement les cabosses malades.
Lutte mécanique : Enveloppez les cabosses dans des sacs en papier ou dans un sac en polyéthylène pour créer une barrière physique à la ponte
lorsqu’elles mesurent 8 à 10 cm de long.
Lutte biologique : Fourmis telles que Dolichoderus thoracicus et Oecophylla smaragdina. Il a également été découvert que le champignon Beauvaria
bassiana peut infecter les larves et les pupes, provoquant un taux de mortalité de 100 %. L’utilisation de pièges contenant des phéromones synthétiquedes femelles de la teigne javanaise peut contrôler l’attaque si suffisamment de mâles sont capturés, interrompant ainsi leur cycle de reproduction.
Lutte chimique : Il est possible de lutter contre la CPB en utilisant des quantités relativement faibles de pyréthrinoïdes de contact appliqués sur la faceinférieure des branches inférieures, ce qui permet de maintenir la population de la CPB en dessous des niveaux de dommages économiques. Cepend
cela n’est généralement pas viable économiquement. Utilisation de pesticides synthétiques approuvés localement uniquement en dernier recours.
Niveau seuil : L’insecte n’est généralement pas soumis à des méthodes de lutte, sauf à l’amélioration de l’assainissement et à la gestion des plantation
des pièges à phéromones sont disponibles, le seuil peut être fixé à 10 mâles par piège et par semaine.

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Larve du foreur de tiges du cacaoyer(Eulophonotus Myrmeleon) à l’intérieur d’une
brancheTrou dans une tige causé par le passage dela larve du foreur de tiges du cacaoyer(Eulophonotus Myrmeleon).

Adulte du foreur de tiges (Eulophonotus myrmeleon)

Le foreur de tiges du cacaoyer (Eulophonotus Myrmeleon) était autrefois considéré comme un ravageur mineur, mais il est devenu un problème de plus en plu
important en Afrique de l’Ouest.
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Dégâts : Les larves creusent des tunnels dans les cacaoyers, causant des dommages à environ 5 % des arbres. La guérison est peu probable. Les tiges
présentent des trous, avec parfois des excroissances à la base de l’arbre ou de la gomme suintant des trous. Les tunnels provoquent des décolorations
les tiges et les pousses. Deux périodes d’attaques sévères ont lieu pendant la saison des pluies avec des pics en juin et en décembre/janvier.
Prévention : Surveillance hebdomadaire pour prévenir l’infestation.
Surveillez l’apparition des adultes en août et en février. Un assainissement rigoureux. Encouragez les populations de pics.
Lutte mécanique : Élagage des branches infestées. Déracinez et détruisez les arbres fortement infestés. La plantation de barrières comme des peuplem
denses de taro a été suggérée. Les barrières doivent avoir une largeur de 15 m et être établies avant les nouvelles plantations. Il est également
recommandé de supprimer les plants hôtes alternatifs. Il peut être utile de boucher les trous pour empêcher les papillons adultes de sortir.
Lutte biologique : Libérez des parasitoïdes comme Bracon zeuzerae ou Glyptomorpha ssp. Le champignon Beauveria bassiana lorsqu’il est disponible dle commerce.
Lutte chimique : Les pulvérisations sont inefficaces et ne sont pas recommandées.
Niveau seuil : Dès que des trous de forage sont observés, des mesures doivent être prises, même au niveau de chaque arbre.

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Le ver de la capsule épineux (Earias biplaga) attaque le cacaoyer parmi une large gamme d’autres plants
hôtes.
•••

Ver de la capsule épineux (Earias biplaga)•••

Dégâts : La larve mange les extrémités des tiges en croissance et les jeunes feuilles molles. L’activitéd’alimentation empêche le plant de se développer correctement pour former une canopée.
Favorisé par les conditions de forte luminosité (sans ombre).
Prévention : Plantez des arbres d’ombrage à croissance rapide dans les plantations nouvellementétablies. Augmentez la biodiversité, car le ver de la capsule préfère les plants hôtes sauvages et lesutilisera comme source de nourriture au lieu du cacaoyer. Dans un écosystème à forte biodiversité, lenombre d’ennemis naturels augmente également.
Lutte biologique : Bactérie entomopathogène Bacillus thuringensis (Bt) ; punaises prédatrices comme
Macrolophus pygmaeus ou(Nesidiocoris tenui) ; guêpes parasites (Trichogramma ssp)
Lutte chimique : Elle n’est pas nécessaire. Les mesures de lutte biologique sont suffisantes.
Niveau seuil : 40 % des arbres sont touchés.

Papillon de nuit adulte Earias biplaga

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Œuf

Durée (dépend des espèces
et des conditions
environnementales)
30 heuresLarve> 1 semainePupe

6 jours

Étape

Mouches des fruits(Infos générales)

HabitatS’insèrent dans le tissu du fruit
Tunnel à l’intérieur des fruits

À l’intérieur du fruit ou dans le sol
Mouche ailée mobile à la recherche d’un plant hôte et d’un
Adultepartenaire d’accouplement
Les mouches des fruits (Bactrocera dorsalis et Ceratitis capitata) sont de minuscules mouches (4 à 6 mm de long)qui attaquent le cacaoyer au Kenya.
•••
Mouche des fruits adulte (Bactrocera
dorsalis)•••

Dégâts : causés par les asticots qui se développent à l’intérieur de la cabosse après que les mouches
adultes ont pondu leurs œufs dans les cabosses de fruits en cours de maturation.
Les infections secondaires de la pourriture augmentent le niveau des dommages.
Aggravée par le fait que les cabosses de fruits infectées restent sur le sol où les asticots se développent etréinfestent la culture. Températures de 20 °C à 30 °C.
Prévention : Lutte minutieuse et assainissement des cultures. Ramassez et détruisez toutes les cabosses
tombées et infectées afin d’éviter l’accumulation de ravageurs et de réduire les cycles de réinfestation.
La surveillance du niveau seuil est généralement effectuée avec des pièges à appâts et calculée entermes de mouches capturées/semaine. Enveloppez les cabosses à un stade précoce dans des sacs enpapier ou un sac en polyéthylène pour créer une barrière physique à la ponte.
Lutte biologique : pièges à appâts
Niveau seuil : 4 mouches par piège/semaine

Mouche des fruits adulte (Ceratitis
capitata)

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Œufs

Durée (dépend des espèces
et des conditions
environnementales)
7 jours

Nymphe3 semaines

Adulte< 30 jours

Étape
Thrips (Informations générales)

HabitatS’insère dans le tissu végétal
Avant de se transformer en adultes, les nymphes se cachent dansle sol sans se nourrir
Dessous des feuilles

Thrips (Selenothrips rubrocinatus, Heliothrips rubrocinctus) et thrips à bandes rouges (Selenothrips rubrocinctus)
•
•
•
•
•
Thrips à bandes rouges (Selenothrips
rubrocinctus)•••

Symptômes : Les thrips attaquent les feuilles, les fleurs et les pousses plus âgées, râpent les tissus
végétaux et sucent la sève. Les feuilles attaquées tombent, laissant des pousses nues avec quelques
jeunes feuilles à l’extrémité. Les plants perdent leur vigueur et les feuilles se flétrissent.
Dégâts : L’infestation des fleurs entraîne une mauvaise formation des fruits. Même des infestations
limitées localement peuvent causer des dommages considérables. Vecteur de virus.
Favorisé par le stress de la sécheresse. Températures de 25 °C à 30 °C, faible humidité, présence depollen.
Prévention : Conservez la présence des ennemis naturels.
Lutte mécanique : Pièges collants (à utiliser uniquement pendant la période d’infestation). Dès quevous constatez qu’aucun parasite ciblé n’est piégé, il est préférable de les retirer pour éviter que desinsectes indésirables ne soient piégés, ce qui pourrait rompre l’équilibre de l’environnement)
Lutte biologique : Les punaises anthocorides sont importantes dans la lutte naturelle contre les thrips.
Les acariens prédateurs peuvent être utilisés pour lutter contre les thrips. Ils doivent être introduits audébut de la saison de culture et relâchés plusieurs fois au cours de la saison.
Lutte chimique : une huile horticole ou une solution huile-savon peut être pulvérisée pour étouffer les
thrips.
Niveau seuil : 1-2 par feuille pendant la sécheresse et 2-3 pendant les pluies.

Dégâts causés par le thrips sur la feuille87
SA-G-SD-9-V1

MALADIES COURANTES DU CACAOYER
Les maladies fongiques sont d’une importance majeure tant pour les arbres que pour les cabosses, et la gravité de la maladie variegénéralement selon la variété. Les souches Botryodiplodia theobromae, Oncobasidium Theobroma et Moniliophthora spp jouent un rôlemajeur. L’autre grand groupe de maladies est provoqué par des oomycètes, des micro-organismes de type champignon, comme les souchesde Phytophtora spp.
L’infection par Phytophtora palmivora peut conduire à différentes expressions de la maladie. Au stade de la pépinière, il provoque
généralement la pourriture des racines, qui conduit à la fonte des semis, appelée brûlure des semis. Dans les plantations matures, elle conduit àla pourriture noire des cabosses. Cependant, des maladies similaires qui sont également classées comme pourriture noire des cabosses peuvent
aussi être causées par plusieurs autres espèces de Phytophtora. En Afrique de l’Ouest et dans les hybrides de cacaoyer Trinitario, Phytophtora
palmivora provoque des chancres des tiges.
Brûlure des semis (Phytophthora palmivora)
•
•
•
•
•
Brûlure des semis (Phytophthora palmivora)•

Dégâts : Les lésions peuvent apparaître sur les feuilles ou les tiges. Les lésions évoluent vers undépérissement complet des feuilles ou une tige noircie, provoquant rapidement la mort des semis. Plussévère sur les semis de 1 à 4 mois.
Favorisée par la saturation en eau et les fortes précipitations.
Prévention : Enlevez et détruisez tous les plants infectés dans la pépinière. La maladie est transmise par lesol et la terre infectée ne doit donc pas être réutilisée ou au moins être stérilisée. Assurez un drainage
adéquat et évitez la saturation en eau.
Lutte biologique : aucune à ce jour.
Lutte chimique : Arrosage prophylactique du sol avec de la bouillie bordelaise à 1 % ou de l’oxychlorure decuivre à 2-2,5 %.
Niveau seuil : Des mesures immédiates sont nécessaires pour améliorer le drainage et éliminer les semis
malades.

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Dégâts de pourriture noire des cabosses (Phytophthora palmivora) sur la cabosse

Dégâts internes de la pourriture noire des cabosses (à gauche) et champignon blanccommençant à recouvrir la cabosse (à droite)

Pourriture noire des cabosses (Phytophthora palmivora, P. megakarya et P. capsica)
maladie fongique qui peut être causée par divers agents pathogènes•

Dégâts : Les cabosses peuvent être attaquées à n’importe quel stade de développement, et les premiers symptômes sont de petites taches
dures et sombres sur n’importe quelle partie de la cabosse. Les tissus internes, y compris les grains, se ratatinent pour former une cabosse
momifiée, devenant brun foncé. Ils peuvent éventuellement être recouverts d’une croissance de champignons blancs.
Les tissus internes ainsi que les grains se décolorent. Si les grains sont presque mûrs au moment où la cabosse est infectée, ils peuvent échapper aux
dommages parce qu’ils sont déjà séparés de la cosse.
P. palmivora entraîne une perte de rendement de 20 à 30 % et la mort de 10 % des arbres chaque année,
P. megakarya est le pathogène le plus important et le plus agressif en Afrique centrale et occidentale. S’il n’est pas traité, il peut entraîner une perte derendement de la totalité de la récolte en une saison
P. capsici est répandu en Amérique centrale et en Amérique du Sud, où il cause des pertes importantes.
• Favorisée par des conditions de pluie excessive ou de forte humidité, un ensoleillement insuffisant et des températures inférieures à 21 °C.
Espacement inadéquat et faible aération. Dans des conditions ou des saisons sèches, le champignon survit dans les coussins floraux, les cabosses
momifiées (sèches), les enveloppes des cabosses et dans le sol. Les cabosses et autres tissus blessés par les ravageurs sont très sensibles aux infections.
• Prévention : Une récolte régulière et complète est essentielle. Maintenez des niveaux élevés d’assainissement en enlevant et en éliminantpériodiquement les cabosses et les débris infectés. Optimisez l’ombre et l’aération par un espacement et une taille appropriés pour réduire
l’humidité de surface. Améliorez la fertilité du sol et appliquez des couches de paillage suffisantes.
• Lutte chimique : Fongicides contenant du cuivre à intervalles fréquents dès le début de la saison des pluies principale.
• Niveau seuil : un assainissement immédiat est nécessaire dès l’apparition des premiers symptômes.

89
SA-G-SD-9-V1

La décoloration violette visible une fois la lésion provoquée
par le chancre des tiges (Phytophthora palmivora) est grattée.

Lésion causée par le chancre des tiges

Chancre des tiges (Phytophthora palmivora)
•

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•
•
•
•

Dégâts : Les chancres apparaissent soit sur le tronc principal, les jorquettes ou les branches en éventail. Commence par une lésion ovale ouronde brun grisâtre sur l’écorce externe, suintant un liquide, qui forme des croûtes brun rouille. Les tissus situés sous la lésion externe sont violets(pourriture). Si elles ne sont pas contrôlées, les lésions recouvrent complètement la tige, empêchant la circulation de l’eau dans les tissus
végétaux, et provoquent finalement la mort de l’arbre. Provoque des pertes importantes en Afrique de l’Ouest et chez les hybrides Trinitario.
Favorisé par des conditions humides et un drainage inadéquat. Les dommages à l’écorce sont nécessaires à l’infection du bois et audéveloppement du chancre.
Prévention : Augmentez les niveaux de matière organique du sol pour améliorer le drainage. Évitez de blesser l’écorce. Coupez et enlevez lesbranches flétries.
Lutte biologique : aucune disponible pour le moment.
Lutte chimique : Elle peut être utilisée dans les premiers stades en grattant l’écorce malade puis en appliquant de la bouillie bordelaise ou unepâte d’oxychlorure de cuivre.
Niveau seuil : Un assainissement immédiat est nécessaire dès l’apparition des premiers symptômes.

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Le balai de sorcière (Moniliophthora perniciosa) est l’une des maladies les plus
dévastatrices et les plus répandues en Amérique du Sud, dans les Caraïbes et au
Panama.
•Dégâts : les cacaoyers produisent des branches sans fruits et des feuilles
inefficaces. Les cabosses sont déformées et présentent une maturation
irrégulière. Des rendements considérablement réduits.

•

Favorisé par un taux d’humidité élevé (=80 %) et des températures entre 20 et
30 °C. Propagé par l’eau, le vent, les graines sur les travailleurs ou par lematériel végétal infecté déplacé entre les plantations.

•

Prévention : Plantez des variétés/clones résistants, par exemple ceux dérivésd’arbres parents Sca6. L’élagage est le meilleur moyen de lutter contre le balaide sorcière. Enlevez complètement toutes les parties infectées du plant.
Améliorez l’aération. Le CIRAD a identifié quelques génotypes résistants en
Guyane française.

•

Lutte chimique : Fongicides. Utilisation de pesticides synthétiques approuvés
localement uniquement en dernier recours. Avant de procéder à l’applicationd’insecticides, consultez toujours la liste des insecticides interdits et la listed’atténuation des risques de l’Annexe 7 de la norme 2020 de Rainforest
Alliance.

Croissance fongique blanchâtre sur la nervure médiane des feuilles tuées parle balai de sorcière (Moniliophthora perniciosa)

Grains de cacaoyer à l’intérieur de la cabosse détruits par le balai de sorcière

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Pourriture noire des cabosses (Botryodiplodia theobromae)
•

•
•

•
•
•

Dégâts : Des taches jaune clair se développent sur la surface de la cabosse ets’étendent rapidement pour devenir ensuite brun foncé. Toute la cabosse, ycompris les grains, devient noire. Les grains ne se développent pas
complètement et se momifient s’ils sont infectés à un stade précoce.
Favorisée par la saison sèche, sur les arbres qui subissent un stress. Causée pardes blessures sur les cabosses provoquées par des insectes ou des rongeurs.
Maladie typique des plantations mal gérées.
Prévention : Luttez contre les insectes nuisibles ou les rongeurs qui pourraient
endommager les cabosses. Améliorez l’ombrage et la gestion des sols ainsi
que l’assainissement. Augmentez la capacité de rétention d’eau en ajoutant
des quantités suffisantes de matière organique (paillage) pour éviter le stressde la sécheresse.
Lutte biologique : aucune à ce jour
Lutte chimique : Pulvérisation de bouillie bordelaise 1 %.
Niveau seuil : La gestion des plantations doit être améliorée dès l’apparition
des premiers symptômes.

Dégâts causés par la pourriture noire des cabosses

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Maladie fongique de la pourriture glaciale/aqueuse (Moniliophthora roreri).
•
•
•
•
•
•
Dégâts causés par la pourriture
glaciale

Dégâts : ne touche que les cabosses immatures. Les taches apparaissent sur la surface des cabosses immatures,
deviennent brunes et s’agrandissent rapidement pour couvrir toute la surface de la cabosse. Provoque degraves pertes dans les régions du sud-ouest de l’Amérique du Sud.
Favorisée par les périodes de fortes précipitations.
Prévention : Sélectionnez des variétés qui produisent des cabosses pendant la saison sèche. Retirez les cabosses
présentant des symptômes de maladie.
Lutte biologique : aucune à ce jour.
Lutte chimique : l’application de fongicides contenant du cuivre contribuera à réduire l’incidence de lamaladie.
Niveau seuil : Une action sanitaire immédiate dès l’apparition des premiers symptômes est recommandée pouréviter la propagation.

Dégâts causés par la pourriture
glaciale sur les grains

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Maladie fongique du dépérissement des stries vasculaires VSD (Oncobasidium theobroma)•••

Dépérissement des stries vasculaires
(VSD)

•
•
•

Dégâts : Les premiers signes de la maladie montrent un jaunissement caractéristique d’une ou deux feuilles surla deuxième ou troisième poussée derrière l’extrémité de croissance. Les feuilles malades tombent quelques
jours après avoir jauni et les autres feuilles de la pousse présentent des symptômes similaires. Lorsque la pousse
infectée est fendue dans le sens de la longueur, on observe toujours une strie brune caractéristique. Provoquele dessèchement de l’arbre, à partir de l’extrémité des branches, ce qui entraîne généralement la mort del’arbre.
Favorisée par les conditions climatiques sèches et le vent qui disperse les spores.
Prévention : Possibilité de lutte en taillant régulièrement les chupons et en éliminant des branches malades. La
taille du matériel malade à environ 30 cm sous le tissu décoloré empêche l’expansion de l’infection. N’installez
pas de pépinières de cacaoyer à proximité d’une zone malade et ne réceptionnez pas de plants provenant dezones malades. Les semis peuvent également être développés sous plastique pour éviter les infections
provenant des plantations voisines.
Variétés résistantes : comme CCRP-1 à CCRP-7 de l’Inde.
Lutte chimique : Inefficace.
Niveau seuil : Des mesures sanitaires doivent être prises dès l’apparition des premiers symptômes.

Le Swollen Shoot est une maladie virale transmise par les cochenilles farineuses. Ce problème touche uniquement leTogo, le Ghana, la Côte d’Ivoire et le Nigeria.
•••

Virus du Swollen Shoot ducacaoyer (CSSV)•••

Dégâts : Gonflement des pousses ou des tiges accompagné de veines rouges sur les feuilles, en particulier surles feuilles les plus jeunes, avec des marbrures interveinales chlorotiques. Les cabosses sont inhabituellement
lisses et tachetées, avec des grains de plus petite taille. Une défoliation progressive peut se produire,
provoquant finalement la mort de l’arbre.
Favorisé par : des niveaux élevés d’infestation par les cochenilles farineuses. Hôtes alternatifs : plusieurs espècesd’arbres telles que Ceiba pentandra, Sterculia tragacantha, Adansonia digitate, Cola chlamydantha et Colagigantia se sont révélées être des hôtes alternatifs du CSSV au Ghana.
Prévention : Si les infections sont détectées à un stade précoce, ce traitement sélectif consistant à enlever et à
détruire les arbres infectés et ceux qui les entourent (jusqu’à 5 m de l’arbre infecté si <10 arbres sont infectés etjusqu’à 15 m si >100 arbres sont infectés) afin d’empêcher toute propagation ultérieure est appliqué ; établissez
une barrière de plants non hôtes (par exemple, palmier à huile) d’au moins 10 m pour isoler les plantations decacaoyers les unes des autres.
Luttez contre les cochenilles farineuses.
Lutte chimique : aucune
Niveau seuil : un assainissement immédiat est nécessaire dès l’apparition des premiers symptômes.

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Flétrissement des chérelles/des jeunes cabosses : Trouble physiologique•••

Flétrissement des chérelles•••

Dégâts : Les chérelles meurent et se momifient dans une certaine mesure : il s’agit d’un processus naturel qui
permet d’éviter les surcharges, mais qui peut entraîner des pertes importantes. Favorise également l’infection
secondaire par l’anthracnose.
Favorisé par des facteurs d’affaiblissement des arbres comme les attaques de ravageurs ou de maladies, la faible
fertilité des sols ou une mauvaise gestion des plantations.
Prévention : Améliorez la fertilité du sol et les niveaux de matière organique du sol. Densité de plantation
appropriée ou évitez le surnombre des arbres.
Lutte biologique : aucune
Lutte chimique : aucune
Niveau seuil : Les signes d’infection doivent inciter à améliorer la gestion de la fertilité des sols.

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Crédits photo :Kissan Kerala, Tamil Nadu Agricultural University (TNAU), India
Jeffrey W. Lotz, Florida Department of Agriculture and Consumer Services, Bugwood.org
Florida Division of Plant Industry
Lyle J. Buss, University of Florida
Infonet Biovision
CABI - Cocoa Research Institute of Ghana
CABI - Plantwise Knowledge BankDr YSRHU University Hortiportal
https://plantvillage.psu.edu/topics/cocoa-cacao/infos http://www.dropdata.org/cocoa/cocoa_prob.htm (RPB)
Wikipedia — Bernard Dupont
University of Florida
Farmersgrid, Adhish Technologies, Madurai, Tamil Nadu, India
Forum for Agricultural Risk Management in Development
Australian Centre for International Agricultural Research - Helen Tsatsia & Grahame Jackson
Scott Bauer, USDA
Jake Teo
Depositphotos.com
Raymond Cloyd
Akua Konadu Antwi-Agyakwa
Haravu Lokesh
Luntian Farm

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CONSEILS SPECIFIQUES AU BANANIER
Clause de non-responsabilité
Ce document d’orientation sur la PIC spécifique aux cultures n’entend pas couvrir tous lesravageurs par culture. L’objectif est de présenter les ravageurs/maladies les plus courants qui
affectent certaines cultures dans plusieurs régions du monde.

Introduction
Pour les pays producteurs et exportateurs, les cultures de bananes (Musa AAA) sont d’une
importance économique capitale. En plus de contribuer à la sécurité alimentaire, la culturede la banane est une source d’emplois directs et indirects et de pénétration du marchéétranger. Cependant, la production de bananes présente de nombreux défis, car il s’agit
d’une culture extensive avec de longues périodes de production (la plantation moyennes’étend sur 25 ans), ce qui la rend vulnérable aux attaques de ravageurs et de maladies. Parmi
les principaux ravageurs et maladies pour la production de bananes figurent la sigatoka noir
(Mycosphaerella fijienses), les insectes (divers genres et espèces attaquant le régime, lesfeuilles et le rhizome), les adventices (divers genres et espèces de plantes), les champignons
post-récolte (Fusarium spp., Colletotrichum spp.) et la maladie du moko (Ralstonia
solanacearum). En plus de ce qui précède, une nouvelle menace est apparue ces dernières
années, le flétrissement fusarien (Fusarium oxysporum f.s. cubensi race 4), qui pourrait dévasterdes plantations entières.
En conséquence des pertes causées par les ravageurs, la protection intégrée des cultures (PIC)(Stephen et Hansen, cité par Cubillo, 2013) a été établie en 1959 comme une stratégie
intégrale pour réduire les coûts de production et protéger la santé humaine etenvironnementale. La stratégie de PIC a été adoptée dans la production de bananes après
une série de crises historiques dans la protection phytosanitaire de la culture, caractérisée parla dépendance aux pesticides et leurs effets indésirables, tels que l’apparition de nouveauxravageurs, d’organismes résistants, l’augmentation des coûts et les pertes associées aux
ravageurs.
L’objectif ultime d’une stratégie de PIC est de produire des cultures saines en minimisantl’utilisation de pesticides.

Recommandations générales
Choix du site pour la culture

Conditions decroissance

AltitudePente
Température
Précipitations
HumiditéSélection de variétés adéquates par
site

Latitude entre 0 et 15º ; sols de classe 1 et 2 ; plans inclinésde 0 à 1 % ; profondeur de 1,20 m ; textures loameuse,loameuse légère, loameuse-sableuse ; loameuselimoneuse ; pH de 5,5 à 7,0 ; nappe phréatique > 1,20 m ;sols sans roches ; aucune menace d’inondation.
Altitude optimale entre 0 et 300 mètres au-dessus duniveau de la mer pour le bananier de plaine. Entre 350 et
1500 mètres au-dessus du niveau de la mer pour lesbananiers de moyenne et de haute altitude.
Pente optimale entre 0 et 1 %Entre 21 et 30 °C ; température optimale moyenne à 25 °C.
100 à 180 mm/mois Si la quantité de précipitations est
inférieure, une irrigation complémentaire sera nécessaire.
50 %, bien que ce ne soit pas une variable limitative.
Les trois principales variétés du sous-groupe Cavendish(AAA) dans le monde sont : Grand Nain (Grand Nainnormal, Oaxacan, Français) Williams et Valery.

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Mesures de lutte contre l’érosion

Conserver la fertilité et la santé dessols

Maintenir des niveaux adéquats dematière organique dans le sol

1. Plantez sur un sol nivelé ou nivelez le sol lors de la
préparation du sol.
2. Maintenez un bon couvert végétal naturel (entre 50 et60 %) sans affecter la production.
3. Maintenez une densité de population adéquate en
fonction de la variété et du type de sol.
4. Réduisez la charge chimique sur les cultures en
diminuant l’utilisation de pesticides synthétiques et en
augmentant l’utilisation de pesticides biologiques etbotaniques.
5. Placez des jauges de sédimentation ou des jauges àsédiments dans la zone de culture et à la base des canauxde drainage (canaux primaires, secondaires et tertiaires).
6. Instaurez une couverture végétale dans les canaux dedrainage (dans l’ensemble du réseau de drainage) pourprévenir l’érosion des berges et de la base des canaux.
7. Dans les exploitations qui ont recours à l’irrigation,n’appliquez que la quantité d’eau nécessaire à la culture.
1. Utilisez et conservez de la matière organique ; celle-ci
est la source de fertilité du sol et améliore ses
caractéristiques physiques et chimiques.
2. Réduisez l’utilisation des engrais de synthèse (si la
production n’est pas compromise), en particulier de ceux
qui sont une source d’azote.
3. Entretenez correctement le réseau de drainage afin
d’avoir une bonne aération et perméabilité du sol.
4. Maintenez une bonne couverture végétale dans la zone
de culture.
5. Déterminez la nécessité d’une application
supplémentaire de nutriments à la culture, en fonction desrésultats des analyses foliaires et du sol.
6. Utilisez des amendements pour le sol contenant dessources de calcium (calcaire dolomitique, roche
gypseuse, silicium) pour améliorer la structure du sol.
7. Une utilisation adéquate et responsable des produits
agrochimiques est essentielle pour maintenir la bonne
santé des sols.
1. Laissez les résidus de culture sur le terrain.
3. Maintenez une bonne couverture végétale sur le terrain.
4. Maintenez une densité de population de cultures
adéquate.
5. Réalisez des applications complémentaires de sourcesde matières organiques.
6. Assurez un bon drainage.
7. Établissez une couverture végétale dans les canaux dedrainage (dans l’ensemble du réseau de drainage).
8. Maintenez une humidité adéquate du sol.
9. Appliquez des amendements bio, tels que des algues
marines et autres.
10. Réduisez l’utilisation des engrais de synthèse.

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RAVAGEURS COURANTS DU BANANIER
Cochenilles farineuses
Informations générales
Les cochenilles, cochenilles farineuses ou cotonneuses, sont des insectes appartenant à l’ordre des hémiptèreset à la famille des Pseudococcidae. Elle est considérée comme un ravageur justiciable de quarantaine. Lesprincipales cochenilles associées aux bananiers sont : Planococcus citri Risso, Dysmicoccus brevipes Cokerell,
Pseudococcus jackbeardsleyi Gimpel et Miller, Pseudococcus elisae Borchsenius et Ferrisa virgata Cokerell(Cubillo, 2013). Diverses espèces participent en tant que vecteurs du virus de la striure du bananier (BSV).
Femelle adulte Pseudococcus
elisae14

Fourmis associées aux
cochenilles du bananier(Pseudococcus elisae)15

14•

Symptômes : voici les symptômes provoqués par l’infestation des différents organes : déformations desbourgeons terminaux et axillaires ; feuilles qui se dessèchent et tombent ; petits fruits déformés qui
tombent sous l’impact des toxines injectées ; et enfin un hôte gravement infesté peut mourir (Palma etal., 2019).

•

Dégâts : Les cochenilles farineuses sont connues pour leur importance commerciale, car elles peuvent
affecter tous les stades de développement des cultures et provoquer des pertes de récolte et le rejetde fruits pour l’exportation. Elle provoque des dommages directs au plant, dus à l’aspiration de la sève,ainsi que des dommages indirects dus à la quantité de substances sucrées (miellat) excrétées, qui
attirent les fourmis et favorisent le développement de la fumagine des feuilles et des régimes. Lesdommages causés par les cochenilles farineuses se manifestent par un affaiblissement du plant et aussi
par une décoloration des feuilles avec des nécroses sur leur bord.

•

Conditions prédisposantes : Les périodes de fortes précipitations antérieures (> 400 mm/mois) favorisentl’apparition de cochenilles farineuses.

•

Prévention :o Destruction de l’habitat où l’insecte se reproduit ou se développe et des plants hôtesalternatifs17 ; réduction de l’humidité.

Tiré de Cubillo 201315 Source : Tiré de Cubillo 2013
17 Grande variété de familles :Aizoaceae, Arecaceae, Asclepiadaceae, Asteraceae, Boraginaceae, Cactaceae, Cannaceae, Chenopodiaceae, Convolvulaceae, Crassulaceae, Cruciferae, Euphorbiaceae, Lauraceae, Fabaceae,
Liliaceae, Malvaceae, Musaceae, Nyctaginaceae, Portulacaceae, Proteaceae, Rutaceae, Scrophulariaceae, Solanaceae, Verbenaceae (Williams et Granara-de-Willink, 1992; Ramos et Serna, 2004; Ben-Dov et al., 2013, cité by Palma etal., 2019). Chez des espèces telles que :Acalypha setosa (feuille de cuivre cubaine), Cissus sicyoides (liane molle), Physalis pubescens (petite tomate du Mexique ou tomate fraise), Piper tuberculatum (cordon), Rivinia humilis (baie de corail),
Urera elata (ortie) et Zingiber officinale (gingembre) (Williams y Granara-de-Willink, 1992, cité par Palma et al., 2019).

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o

o
o
o
o
Présence de cochenilles dubananier (Pseudococcus elisae)
et de fumagine dans un régime
de bananes.16

o
o
o
o
o

Si cela est autorisé dans le pays de production, l’application de soufre à la base du plant, à lapseudo-tige et au bourgeon jusqu’au nœud de cravate de la tige (une pratique utilisée pour labanane biologique au Pérou) (Pasapera 2013).
Gestion adéquate de la densité de population, débourgeonnage et défoliation (cycles selon lesbesoins).
Évitez l’accumulation de résidus végétatifs à la base du bananier pour défavoriser les fourmis etleurs colonies, car elles transportent les cochenilles farineuses.
Éliminez les feuilles qui sont en contact avec le fruit et séparez les tiges des pseudo-tiges.
Effectuez une bonne pratique de mise en sac prématurée avec une inflorescence fermée ou
une bractée ouverte.
Maintenez un drainage adéquat dans toute la plantation pour éviter la formation de flaquesd’eau.
Évitez d’appliquer des nématicides et des insecticides qui affectent les ennemis naturels.
Bonne gestion ou contrôle des graminées du sous-bois, notamment les Cyperacea (González &Cubillo, 2014).
Évitez d’appliquer une fertilisation azotée excessive qui favorise la sensibilité des plants àl’augmentation des ravageurs (Hernández et al., 2011).
Les cochenilles farineuses sont généralement transportées par les fourmis, il est donc
recommandé de lutter contre ce ravageur, ainsi que de plier correctement la feuille étendard
pour que les fourmis n’aient pas accès au régime (Melendez, 2019).

•

Lutte mécanique : lorsque les régimes récemment récoltés présentent des ravageurs, un lavage sous pression à l’eau est nécessairepour éliminer le ravageur dans les extrémités terminales des régimes récoltés.

•Lutte biologique : Divers ennemis naturels ont été déterminés, tels que des parasitoïdes notamment de la famille des Encyrtidae etdes prédateurs de la famille des Coccinellidae. Les autres ennemis naturels sont les champignons entomopathogènes, les chrysopes
et les acariens. Les parasitoïdes spécifiques des cochenilles farineuses sont Anagyrus kamali Moursi et Gyranusoidea indica Shafee(Hymenoptera : Encyrtidae) (Palma et al., 2019). Koppert, cité par Meléndez (2019), a déclaré qu’Anagyrus pseudococci est uneguêpe parasite largement reconnue pour son utilisation dans la lutte biologique contre les cochenilles farineuses. Anagyrus spp
parasite différentes espèces et stades de cochenilles farineuses.

•

Seuil : La gestion consiste fondamentalement en un système d’échantillonnage au niveau de la pseudo-tige ou du régime. Cela
permet de définir les zones où les problèmes sont les plus importants, l’âge du régime lorsque le ravageur apparaît et l’option degestion peut être sélectionnée rapidement (Cubillo, 2013). Pour l’instant, il n’y a pas de tolérance, car il s’agit d’un ravageur
justiciable de quarantaine du port de destination.

16 Source : Tiré de Cubillo 2013

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Cochenilles
Informations générales : Les cochenilles sont des insectes appartenant à l’ordre des hémiptères et à
la famille des diaspididés (Loor, 2016). L’espèce la plus importante sur le plan économique pour laculture du bananier est Diaspis boisduvalii, connue sous le nom de cochenille du bananier ou
cochenille blanche. Ces insectes sont de forme circulaire à ovale étiré, minces, aplatis, de couleur
blanche à jaune pâle, semi-transparents et d’un diamètre compris entre 1,2 et 2,25 mm (Orellana,2007). Elles ne sont pas un ravageur important dans tous les pays producteurs de bananes ;cependant, la cochenille de Boisduval est actuellement l’un des principaux insectes ravageurs descultures de bananiers au Costa Rica et en Équateur, ainsi qu’aux Philippines ; pour cette raison, cettecochenille est considérée comme l’un des 43 ravageurs de ce type les plus importants du monde(Miller et Davison cités par Solano, 2019 ; Loor, 206). Leurs principaux hôtes sont les bananes et lesplantains (Cota et Saunders, cités par Cubillo, 2013). C’est un ravageur justiciable de quarantaine
dans les ports de destination (Cubillo, 2013).
Présence de la cochenille Diapsis
boisduvalii sur les fruits dubananier.18 )Présence de Diapsis boisduvalii
sur le feuillage19.

18 Source:•

Symptômes : Il s’agit un insecte suceur recouvert d’une couche de protéines (exuvies
nymphales) et d’autres substances qui constituent une carapace, une couverture ou une
armure qui, bien que déposée sur le corps, peut en être séparée, constituant un véritablebouclier ou une écaille (Beardsley et González ; Guillén et Laprade ; Antonelli cité par Solano,
2019 ; Cubillo, 2013). Elles provoquent des lésions concaves et chlorotiques (Vargas et al.,2017).

•

Dégâtso Les cochenilles femelles adultes et nymphes se nourrissent de la sève de la pseudotige, des pétales et du col du fruit. Le champignon Capnodium spp. se développe surles excréments des insectes, formant de la fumagine qui affecte la photosynthèse etréduit la qualité et l’apparence des fruits. La fumagine fait perdre aux fruits leur qualitéde présentation (qualité cosmétique), tout en provoquant des nécroses dans lesparties touchées (Pasapera, 2013). Ces lésions provoquent une maturation irrégulière
des fruits.
o Elle augmente les coûts de production et le rejet des fruits du bananier dans les usinesde conditionnement et les ports de destination.

González and Cubillo, 2014

19 Source: Solano, 2019

101
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•Favorisées par : En général, des conditions de fortes précipitations (humidité relative élevée) et de températures élevées,
une lutte inadéquate contre les adventices qui agissent comme hôtes alternatifs pour les cochenilles et les fourmis ; unnettoyage inadéquat de la pseudo-tige (élimination faible ou inadéquate des gaines sèches de la pseudo-tige) ; une
accumulation excessive d’eau dans les drainages et une nappe phréatique élevée en raison d’un drainage inadéquat ;une fertilisation azotée excessive ; l’application de nématicides — insecticides qui affectent les populations de leursennemis naturels.

•Prévention :o Enlèvement profond des gaines sèches de la pseudo-tige,o Rafraîchissez la pseudo-tige de temps en temps, généralement toutes les 6 semaines, éliminez les vieilles sections
pourries ou desséchées.
o Élimination des sections pourries/séchées au moment de la récolte.
o Application de soufre à la base du plant, des pseudo-tiges et de la pousse ou du bourgeon jusqu’au rachis « nœudde cravate » (une pratique utilisée pour les bananiers biologiques au Pérou) (Pasapera, 2013).
o Bonne gestion de la densité de population, effeuillage à jour (cycles selon les cas).
o Élimination des feuilles qui touchent le fruit.
o Séparation du régime de la pseudo-tige.
o Mettez en place une bonne pratique d’ensachage prématuré, de telle sorte que la personne effectuant cetteactivité évite de toucher les feuilles des plants infestés.
o Maintenez un drainage adéquat dans la plantation en évitant la formation de flaques d’eau.
o Évitez l’application de nématicides et d’insecticides qui peuvent affecter les ennemis naturels.
o Évitez les fertilisations azotées excessives qui peuvent favoriser la sensibilité des plants aux attaques des ravageurs(Hernández, et al., 2011).
o Dans certaines exploitations en Équateur, les pseudo-tiges les plus touchées sont retirées, en faisant très attention à
ne pas propager les cochenilles et à ne pas les transmettre aux autres plants de la zone (Meléndez, 2019).
o Une gestion et/ou une lutte adéquate des adventices, car certaines d’entre elles peuvent devenir des hôtesalternatifs pour les fourmis vivant en symbiose avec les cochenilles et favoriser l’augmentation de leurs colonies en
ne permettant pas à leurs prédateurs et parasites de réguler les populations (Loor, 2016).

•

Lutte mécanique : En cas de présence de ravageurs dans les régimes récemment récoltés, il est important de les laver àl’eau sous pression, afin d’éliminer le parasite des parties terminales des régimes récoltés.

•Lutte biologique :o Guillén cité par Vargas, et al., 2017, indique et confirme que les cochenilles ont un groupe très large d’ennemis
naturels, tels que des guêpes parasites de la famille Aphytis, des prédateurs de la famille Coccinelidae (Pentilia sp.,
Delphatus sp.) et des chrysopes (Ceraeochrysa sp.). En plus de ce qui précède, les populations de la cochenille102
SA-G-SD-9-V1ooblanche ou D. boisduvalii ont été régulées par des insectes à ailes en filet, tels que Chrysoperla sp. (Cubillo, 2013).
(Cubillo, 2013).
Solano, 2019, rapporte la présence de trois espèces parasites pour la cochenille de boisduval (Diaspis boisduvalii :Hemiptera : Diaspididae) dans les bananeraies (Musa AAA, sous-groupe Cavendish) du versant caraïbe du Costa
Rica, qui ont été identifiés au niveau du genre comme étant Coccobius spp. (Hymenoptera : Aphelinidae),
Plagiomerus spp. (Hymenoptera : Encrytidae) et Aphytis spp. (Hymenoptera : Aphelinidae) ainsi qu’un spécimen
hyperparasite regroupé dans le genre Ablerus (Hymenoptera : Aphelinidae).
Utilisation d’entomopathogènes tels que Beauveria bassiana et Metarhizium sp. si les produits sont disponibles dansla région (González et Cubillo, 2014).

Seuil : Il n’y a pas de seuil spécifique ; pour les organismes de quarantaine, le seuil est de zéro. L’échantillonnage est
effectué pour déterminer les périodes d’entrée du ravageur et pour déterminer l’efficacité des mesures de gestion.

Adventices (divers genres et espèces de plantes)

Paspalum conjugatum Berg20.

Parthenium hysterophorus L.21

Informations générales :• Les adventices sont des plantes qui concurrencent quantitativement, mais pas
qualitativement les cultures ; elles sont nuisibles par le biais d’effets additifs (concurrence) etd’allélopathie. En outre, il a été prouvé que certaines adventices sont des hôtes alternatifs
pour les ravageurs. Cependant, elles n’ont pas que des mauvais côtés. La plupart desadventices assurent une bonne couverture du sol, empêchant ainsi l’érosion. Les graminées
dans les canaux de drainage ou d’irrigation sont idéales pour préserver les pentes.
• En outre, elles ajoutent de la matière organique au sol et permettent le recyclage et laconservation des minéraux dans le sol ; certaines fixent l’azote et toutes contribuent aumaintien de la faune et de l’équilibre biologique naturel.
•

La lutte contre les adventices doit être intégrée et doit faire suite à une étude de chaqueadventice, de ses habitudes de croissance et de son contrôle.

•

Symptômes : Parmi les effets causés par l’interférence des adventices dans la culture dubananier, les suivants ont été signalés : réduction de la hauteur, de l’épaisseur de la pseudotige et du poids du régime ; carence en azote causée par la compétition et reflétée par le

20 Source : Tiré de fr.wikipedia.org
21 Source : dossiers personnels 2019

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jaunissement des jeunes feuilles ; croissance plus lente avec peu de drageons ; retard de lafloraison avec l’allongement consécutif du cycle de la culture ; rendement réduit.
•

Dégâts : Une période critique de compétition des adventices pendant l’établissement de laculture est reconnue dans la production de bananes. Une deuxième période de concurrence
des adventices se produit entre la floraison de la fleur ou le bourgeonnement du régime etl’épaississement du fruit. Les coûts liés à la lutte contre les adventices sont estimés à environ 5à 6 % des coûts totaux des opérations agronomiques (Quintero y Carbono, 2015), ainsi que labaisse des rendements des cultures pérennes, comme la banane, de l’ordre de 23 à 62 %.

•Prévention : La meilleure méthode de lutte contre les adventices consiste à empêcher
l’introduction de nouvelles espèces dans les champs, ainsi qu’à réduire systématiquement labanque de semences d’adventices dans le sol. Une autre mesure consiste à mettre en place
un système de suivi efficace.

•

Lutte mécanique : Les méthodes les plus courantes de lutte contre les adventices sont lessuivantes :- La préparation du sol avant la plantation, qui est la base de l’élimination desadventices vivaces ; si elles sont présentes.
- La lutte manuelle (défrichement), qui est une pratique de routine pour éliminer lesadventices entre les rangées de plants.
- L’utilisation de paillis (remplissage) pour lutter contre les adventices et préserver
l’humidité du sol.
- L’utilisation d’un couvert végétal intercalé de bananiers, outre l’aide à la production,
pourrait contribuer à améliorer la préservation de la fertilité du sol.

•

Lutte biologique : Aucune référence d’utilisation pratique pour la lutte biologique contre desadventices spécifiques n’est connue.

•

Seuil : 40 à 60 % de couverture d’adventices

Cyperus rotundus (L.) Retz22

22 Source: Tiré deplants.ces.ncsu.edu

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Charançon (picudo)
Informations générales• Le charançon (Cosmopolites sordidus Germar ; Coleoptera : Cuculionidae) est considéré
comme l’un des principaux insectes nuisibles pour la culture du bananier 25. On le trouve
dans toutes les régions tropicales et subtropicales où sont cultivés le bananier, le plantain,l’abaca (Musa textilis) et d’autres Musaceae26 .
• Le charançon adulte est de couleur noire et mesure de 10 à 15 millimètres ; il vit enliberté, bien qu’on le trouve plus souvent parmi les gaines foliaires, sur le sol à la base duplant ou associé aux résidus de culture 27.
•

Symptômes : Wright, cité par Ajanel (2003), a déterminé que la putréfaction peut se
produire dans des rhizomes complètement perforés qui ont été réduits à une masse detissus noircis, tandis que les feuilles meurent prématurément. Les plants infestés ont une
couleur vert jaunâtre pâle et un feuillage mou. Les jeunes pousses sont fréquemment
flétries et leur développement est déficient.

•

Dégâts : Le charançon réduit les rendements en raison de la taille réduite et de la qualité
inférieure des régimes, ainsi que du retard de maturation et de la réduction de la duréede vie utile des plantations en raison de la mauvaise qualité du bourgeonnement. Les
perforations causées par les larves de cet insecte peuvent être utilisées par d’autresorganismes comme porte d’entrée, principalement par la lucilie bouchère Castniomera
humboldti (Lepidoptera ; Castaniidae) ou par des micro-organismes tels que Ralstonia
solanacearum et Fusarium oxysporum (Ajanel, 2003). La présence de pourriture causéepar des bactéries du genre Erwinia sp. dans les cormes était directement proportionnelle
aux dommages causés aux cormes par les charançons28.

Cosmopolites sordidus adulte23.

Plants renversés ou tombées à
cause des dégâts causés par lecharançon.24

Favorisé par : Les charançons sont actifs la nuit et sont très sensibles à la dessiccation ; ils
préfèrent donc les conditions humides et évitent la lumière (Gold et Messiaen, 2000). Lescharançons sont attirés par les substances volatiles du plant hôte émises par les cormes
récemment coupés. En outre, ils peuvent se nourrir de matières végétales en décomposition. Les

23 Source: Gold and Messiaen, 2000
24 Source: Pasapera, 2013
25 Cubillo and Guzmán, 2003
26 Cubillo, 201327 Gold and Messiaen, 2000
28 Cubillo and Guzmán, 2003

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cormes laissés au sol dans les plantations sont visités par l’insecte la nuit et les œufs sont pondus
avant la plantation des cormes, ce qui entraîne la perte du matériel récemment planté29.
•

Dégâts causés par le charançon
dans le corme. (Source : Alarcón et
Jiménez, 2012)

Charançon adulte parasité par
Beauveria bassiana. (Source :Ramírez et Torres, 2016)

Préventiono Utilisez des semences vigoureuses et saines (non infestées) dans de bonnes conditions(Ajanel, 2003).
o Submergez les graines ou les cormes végétatifs dans de l’eau à 52-55 °C pendant 1527 minutes. Ces bains sont très efficaces pour éliminer les nématodes, mais ne tuent
qu’un tiers des larves de charançon (Gold et Messiaen, 2000).
o Dans la mesure du possible, les nouvelles zones de plantation doivent être exemptesde résidus de Musaceae et de la présence de l’insecte (Cubillo, 2013).
o Effectuez une lutte adéquate des adventices.
o Maintenez les sols bien drainés.
o Un abbatage opportun.
o Maintenez une nutrition adéquate des plants. Alarcón et Jiménez (2012)
recommandent de corriger les carences en bore et en potassium.
o Maintenez un système de soutien adéquat.
o Gestion adéquate du système d’irrigation.
o Gestion adéquate des autres ravageurs et maladies.
o Ne laissez pas la pseudo-tige pliée après la récolte, en d’autres termes, ne laissez pas
une extrémité de pseudo-tige pendre après la récolte (Pasapera, 2013).
o Pour maintenir de faibles populations de charançons, il faut déterrer et enlever lesvieux rhizomes, ainsi que les déchets et autres matières végétatives où les charançons
peuvent se reproduire. Retirez régulièrement les bourgeons et les cormes. Lors de larécolte du régime, la pseudo-tige doit être coupée près du sol (Ajanel, 2003).

29 Cubillo, 2013

106
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Lutte mécanique :ooLes pièges faits de pseudo-tiges ou de cormes, qui attirent la nourriture, peuvent être employés à des densités élevées(25 à 50 pièges/ha). Les insectes sont collectés manuellement dans ces pièges (Cubillo, 2013).
un nombre élevé de pièges à phéromones peut être utilisé pour gérer la réduction de la population adulte de C.
sordidus et 6 à 25 pièges/ha peuvent être posés. Cette méthode peut capturer jusqu’à 18 fois plus que les pièges à
pseudo-tige (Cubillo, 2013).

•

Lutte biologique : Les larves d’insectes ont les prédateurs suivants : Plaesius javanus, Hololepta quadridentada(Coleoptera : Histeridae) et Dactylosternum hydrophiloides (Coleoptera : Hydrophilidae), les fourmis : Pheidole
megacephala, P. guineense, Azteca sp. et Tetramorium guineense (Hymenoptera : Formicidae) (Cubillo, 2013 ; Gold etMessiaen, 2000). De plus, les nématodes des familles Heterorhaditidae (Heterorhabditis spp.) et Steinernematidae(Steinernema spp.) attaquent les charançons adultes et larvaires sur le terrain (Cubillo, 2013 ; Gold et Messiaen, 2000).
Cependant, le coût et l’efficacité de ces nématodes ne permettent leur utilisation que là où les charançons sontprésents en fortes densités de population, ce qui limite actuellement leur utilisation à grande échelle. Les champignons
entomopathogènes tels que Beauveria bassiana (Balsamo) et Metarhizium anisopliae (Merch) sont des sources de lutte
contre cet insecte (Cubillo, 2013). Dans des conditions de laboratoire et de terrain, certaines souches de B. bassiana
peuvent provoquer une mortalité supérieure à 60 % (Cubillo, 2013). D’autres prédateurs de larves et d’œufs signalés sontEuborellia annulipes Lucas (Dermaptera : Carcinophoridae) y Labia borelli Burr (Dermaptera : Labiidae), Ontophagus sp.
(Coleoptera : Scarabaeidae) et Eutochia sp. (Coleoptera : Tenebrionidae) (Navas, 2011). La lutte chimique comprend
l’utilisation d’extraits végétaux aux propriétés insecticides, comme le neem (Azadirachta indica A. Juss), qui contient descomposés insecticides tels que les phytoalexines. Musabyimana, cité par Navas (2011), a déterminé que la poudre degraines de neem à 60 à 100 g/plant au moment de la plantation et plus tard à des intervalles de quatre mois pendantune période de trois ans, était efficace pour combattre les charançons, car elle provoque une interférence dans lalocalisation de l’hôte en produisant une répulsion, une réduction de l’oviposition, une substance antiappétante et une
inhibition de la croissance des larves. Gold et Messiaen (2000) mentionnent que l’immersion des pousses dans une
solution de 20 % d’A. indica pendant la plantation protège les jeunes plants des lésions, réduisant l’oviposition grâce àl’effet répulsif sur les charançons.

•Seuil : Il n’existe pas de critère unanime concernant un seuil d’intervention ; cependant, Alarcón et Jiménez (2012),
indiquent que 20 à 25 pièges par hectare sont placés, puis contrôlés deux à trois jours plus tard après avoir été installés etensuite sur une base hebdomadaire, pendant quatre semaines au maximum. Pendant ces révisions, les insectes piégés
sont collectés et comptés. Si le nombre moyen d’insectes par piège est supérieur à 5, il faut procéder à un piégeage
massif pour faire baisser la population ; il faut appliquer un insecticide biologique ou, dans les cas extrêmes, un
insecticide chimique.

•

Échantillonnage : Si l’on échantillonne des lésions dans le corme ou le rhizome, des mesures de gestion sontrecommandées lorsqu’il y a une moyenne de > 15 lésions (Cubillo, 2013).

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Nématodes

Lésions causées par R. similis dansdes racines de bananiers. (Source :Guzmán, 2011)

Informations générales
Les nématodes sont des animaux filiformes, quelque peu transparents, dont le corps non segmenté est
recouvert d’une cuticule hyaline, qui présente des rayures ou d’autres marques ; ils ont une section
transversale ronde, avec une bouche, mais pas d’extrémités ou d’autres appendices (Guzmán, 2011 ;Agrios, 2005).
Il y a 146 espèces de nématodes signalées dans la famille des Musaceae, réparties dans 43 genres.
Parmi l’ensemble des nématodes, 10 % correspondent à des espèces phytoparasites représentant unfacteur important de réduction dans de nombreuses cultures.
Selon Araya, cité par Salazar, et al, 2012, les phytonématodes les plus dévastateurs et les plus
largement disséminés sont les endoparasites migrateurs : Radopholus similis, Pratylenchus coffeae, etle semi-endoparasite Helicotylenchus multicinctus. R. similis (un nématode foreur) est le principal
nématode que l’on retrouve dans les cultures de bananiers. Ainsi, dans cette étude, nous nous
concentrerons sur les mesures de gestion et/ou de lutte de R. similis, qui sont également applicables
aux autres espèces de nématodes qui attaquent les bananiers.
•

Symptômes : Selon le mode d’action des différentes espèces, les symptômes varient du plus
grave, qui est le déracinement du plant, au moins évident, comme des cycles de production
prolongés (Morales, 2014). Bayer, cité par Sierra (1993), indique que lorsque les populations denématodes dépassent certains niveaux, des symptômes apparaissent dans la partie aérienne,tels que le jaunissement, le flétrissement, qui est particulièrement fort aux moments critiques, enraison d’une absorption d’eau déficiente ; avec un diamètre réduit des tiges et une réduction
du nombre et de la taille des feuilles ; un retard de croissance des filles, une réduction de la
taille et du poids des régimes, une dégénérescence des plantations et la nécessité de lesrétablir ou de les rénover en quelques années seulement, une perte d’ancrage et de possibles
chutes de plants.

•

Dégâts : López, cité par Sierra (993), mentionne plusieurs types de dégâts produits par lesnématodes : ils envahissent le système racinaire, le détruisant ; ils réduisent l’ancrage,
provoquant la chute des plants avec une perte conséquente du régime ; ils drainent la force
de la culture et provoquent des carences nutritionnelles ; ils sont la porte d’entrée denombreuses maladies causées par des micro-organismes ; ils provoquent un gaspillaged’engrais ainsi que la destruction des mécanismes de défense des plants en interférant avec
leur système enzymatique.
R. similis est l’espèce phytoparasite la plus abondante et la principale, constituant entre 82 et
97 % de la population de nématodes dans les racines et les cormes (Guzmán, 2011) ; et lorsque

Lésions causées par P.coffeae dansles racines de bananiers. (Source :Soto, 2008)

Lésions superficielles causées par H.
multicinctus dans les racines debananiers.
Source : Coyne et Kidane, 2019.

•108
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ce phytonématode n’est pas contrôlé, il réduit le poids des régimes et le rendement (t ha-1)
en raison de l’effet de l’arrachage, entre 60 et 52 % dans la première et la deuxième récolte,
respectivement. La réduction du rendement peut aller jusqu’à 80 % (Guzmán, 2011).
•

Bananier déraciné avec de graves
dégâts provoqués par R. similis.
(Source : Licona et Mldonado, s.d.)Prévention :
o

o
o

o

o

o
o
o
o

Favorisés par : Les nématodes se concentrent principalement dans les 50 premiers centimètres
de profondeur. Leur mobilité est minime, certains d’entre eux pouvant parcourir quelques
centimètres au cours de leur vie, de sorte que leur diffusion s’opère par des moyens externes,
tels que les machines agricoles, l’eau d’irrigation, les humains et les animaux, entre autres. Ils se
déplacent plus rapidement lorsque le sol est humide (Sierra, 1993).

Utilisez du matériel de plantation propre et exempt de nématodes. Il est recommandé d’immerger les graines ou lescormes dans une eau à 52-55 °C pendant 15 à 27 minutes. Ces bains sont très efficaces pour éliminer les nématodes(Gold et Messiaen, 2000).
Dans la mesure du possible, utilisez des plants provenant de cultures de tissus in vitro (Sarah et al., 1996).
Avant d’établir une culture, essayez la solarisation, c’est-à-dire le traitement du sol avec la chaleur du rayonnement
solaire. L’exposition au soleil du matériel « pelé » pendant deux semaines peut réduire davantage les populations denématodes. Cependant, cette technique ne doit pas être utilisée sur les petits drageons, car ils sont assez fragiles etdoivent être replantés rapidement (Sarah et al., 1996).
Une préparation optimale du sol doit être effectuée avant la plantation, pour une meilleure croissance et un meilleurdéveloppement des systèmes racinaires dans les sols meubles. Il en résultera des quantités plus importantes et desracines plus longues, contrairement à ce qui se passe dans les sols lourds et compacts.
L’incorporation constante d’amendements organiques bien traités, tels que le fumier de poulet, la pulpe de café, lelombricompost, le bokashi, les cendres, le fumier de porc, etc., favorisera la santé et la vigueur des racines des culturesde Musacées, leur permettant de mieux lutter contre les nématodes.
Appliquez une fertilisation équilibrée aux plants.
Fournissez des couches d’eau adéquates à travers le système d’irrigation selon les besoins de la culture de la banane.
L’application de lixiviats de rachis de bananier ou de plantain peut réduire les populations de nématodes
phytoparasites, mais leur mécanisme d’action n’est pas encore clair (Salazar et al., 2012)
Les terres sur lesquelles des Musaceae ont été cultivées doivent être laissées en jachère pendant six mois ou plus, voire
deux ans, afin qu’elles puissent se reposer. Sarah et al, 1996, a indiqué que les populations de nématodes peuvent êtreréduites à des niveaux imperceptibles après une seule année de jachère restante, en utilisant des cultures non hôtescomme Chromolaena odorata (Asteracea), très efficace en Afrique, et Panicum maximum (Poaceae) dans le
Queensland (Australie) (Coyne et Kidane 2019). En Côte d’Ivoire, la rotation avec l’ananas (Ananas comosus) acontribué à la réduction des populations de R. similis (Coyne et Kidane, 2019) et la rotation avec la canne à sucre(Saccharum officinarum) a connu un certain succès en Amérique centrale (Coyne et Kidane, 2019).

109
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•

Lutte mécanique : Considérant que R. similis survit dans les cormes et les racines infectés, enlevez les couches externes desrhizomes « pelés » pour éliminer les tissus infectés et réduire les populations de nématodes ; de plus, cette pratique permetd’inspecter les tissus blancs, afin de détecter la présence de charançons. Le nettoyage sanitaire des cormes par« épluchage » doit être effectué en dehors des champs et les cormes nécrosés gravement endommagés doivent être jetés.
Seuls des cormes propres doivent être utilisés pour la plantation (Guzmán, 2011).

•

Lutte biologique : Les champignons entomopathogènes les plus couramment utilisés contre R. similis dans les cultures debananiers sont probablement ceux basés sur le Purpureocillium lilacinus (anciennement connu sous le nom de Paecilomyces
lilacinus). Il existe plusieurs produits et formulations disponibles dans le commerce. Le champignon attaque les œufs, les jeunes
et les adultes. Les résultats varient selon les conditions, mais en général, ils exercent un bon niveau de lutte et sontfinancièrement viables. Il a été démontré que l’invasion des racines de bananiers par R. similis est inhibée par des bactéries
entomopathogènes comme les espèces de Bacillus, telles que B. firmus et B. subtilis, ainsi que Pseudomonas fluorescens(Coyne et Kidane, 2019). Les Pasteuria spp., qui sont des bactéries parasites des nématodes, diffèrent en ce qui concerne
leur gamme d’hôtes et leur pathogénicité envers les nématodes. Il a été découvert que Pasteuria penetrans est un parasite
de R. similis (Coyne et Kidane, 2019), mais cette espèce n’a pas été pleinement développée comme agent contre ce
ravageur. Divers essais ont été réalisés sur l’utilisation et l’inoculation de champignons endophytes (Trichoderma spp. etFusarium spp.) dans des vitroplants en serre avec des résultats prometteurs. Selon Meneses (2003) et Morales (2014), leschampignons endophytes Trichoderma spp. et Fusarium spp. entraînent des réductions de 75 à 100 % des populations de R.
similis. De meilleurs résultats ont été obtenus en combinant les deux espèces de bactéries. En outre, les plants ont développé
un poids radiculaire plus important et une croissance supérieure lorsqu’ils étaient exempts de nématodes. Enfin, les effets
favorisant la croissance des plants causés par les champignons mycorhiziens arbusculaires ne fournissent pas seulement desavantages potentiels pour le bananier, mais il a également été démontré qu’ils réduisent l’infection et les dommages causéspar R. similis (Coyne et Kidane, 2019). La densité totale de R. similis a diminué de 60 % et la nécrose des racines de 56 % dansdes plants de bananiers colonisés par des champignons mycorhiziens arbusculaires dans des conditions de serre (Coyne et
Kidane, 2019). Cependant, comme cela a été constaté à plusieurs reprises lors de l’évaluation et de l’application d’agentsde lutte biologique, les réactions peuvent être assez spécifiques en fonction du cultivar hôte et des espèces ou souches
d’agents de lutte (Coyne et Kidane, 2019). En ce qui concerne la lutte chimique avec des produits naturels, les formulations àbase de neem (Azidirachta indica) se distinguent par une bonne gestion des nématodes du bananier (Coyne et Kidane,2019). Il a été démontré que les produits à base de sésame, les mélanges d’huiles essentielles contenant du sésame ou del’ail, les furfuraldéhydes et les produits à base de Myrothecium verrucaria sont très toxiques pour les nématodes et peuvent
permettre une réduction très prometteuse de R. similis.

•

Seuil : Le seuil déclenchant l’application de nématicide dépendra de paramètres locaux, tels que les conditions climatiqueset pédologiques et l’agressivité du pathotype. Pour que cet exercice soit valable, la vérification doit être basée sur un

110
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comptage précis des nématodes. Les nématodes doivent être extraits du matériel végétal et du sol environnant, en utilisantdes protocoles approuvés (Coyne et Kidane, 2019). Sur la côte nord du Guatemala, les niveaux critiques ou les seuils d’action
définis sont les suivants :o Poids des racines fonctionnelles inférieur à 50 g/plant.
o Pourcentage de racines mortes supérieur à 10 %.
o Populations de nématodes entre 30 000 et 40 000 R similis/100 g de racines.
o Déracinement supérieur à 3 plants/ha/semaine.
o Réduction du poids des régimes supérieure à 10 % par semestre.
Dans d’autres pays d’Amérique centrale (dont le Costa Rica) et d’Amérique du Sud, on utilise un niveau de population de 10 000
spécimens/100 g de racines.

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MALADIES COURANTES DU BANANIER
Sigatoka noir (Mycosphaerella fijiensis)
Informations générales
Le Sigatoka noir est causé par un champignon (Mycosphaerella fijiensis) qui attaque les bananes et les plantains.
Il est présent partout sous les tropiques. La dissémination se fait par le vent, l’eau et les porteurs humains. Il s’agit
d’une maladie polycyclique qui sera toujours présente dans une culture permanente. La reproduction se fait parvoie asexuée (conidies) et sexuée (ascospores).

Maturation précoce des fruits entransit en raison de problèmes
dus au Sigatoka noir 30

Un bananier sans feuilles
fonctionnelles en raison d’une•

Symptômes : Le champignon s’attaque principalement aux feuilles et se caractérise par un grandnombre de stries et de taches, notamment sur la face inférieure des feuilles. Tous les stades de la maladie
se retrouvent dans une plantation ; les premiers symptômes sont des stries pratiquement imperceptibles
qui évolueront vers les stades ultérieurs avec des symptômes de nécrose et de brûlure de la zone foliaire.

•

Dégâts : C’est la plus destructrice des maladies foliaires et celle qui entraîne les plus grandes perteséconomiques de récoltes chez le bananier. Sans mesures de lutte, les pertes peuvent atteindre jusqu’à
50 % du rendement et jusqu’à 100 % de la production en raison de problèmes de qualité pourl’exportation. Les coûts de gestion de cette maladie sont élevés — entre 15 et 18 % des coûts totaux deproduction.

•

Conditions prédisposantes : Températures élevées, fortes précipitations, humidité élevée, mauvais
drainage, mauvaise nutrition•

Prévention : Les actions préventives sont axées sur une surveillance constante et une gestion appropriéedes pratiques culturales :o Un niveau nutritionnel adéquat dans la plantation ; des éléments tels que le silicium, le cuivre, lecalcium, le bore et le zinc contribuent à réduire la gravité de la maladie33 .
o Favorisez des conditions d’humidité idéales dans le sol (évitez les accumulations excessives,comme la formation de flaques).
o Gestion ou lutte adéquate des adventices pour éviter une plus grande accumulation d’humidité.
o Évitez les pertes inutiles de feuilles dues à d’autres causes ou pratiques (défoliation protectrice,
défloraison, ensachage, récolte) ; à éviter autant que possible.

30 Source : Tiré des dossiers personnels 201933 Guzmán & Paladines, n.d112
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mauvaise gestion du Sigatoka
noir31

Un bananier prêt à être récoltéet qui a perdu tout son feuillage
en raison d’une mauvaise gestion
du Sigatoka noir32

oApplication d’un mélange ou d’une solution d’urée à 10 % sur les feuilles touchées par le sigatoka
qui se trouvent au sol, ce qui accélère la décomposition de la matière végétale et réduit
l’inoculum.

•

Lutte mécaniqueo L’élagage, consistant à couper la partie apicale de la feuille.
o La chirurgie, une pratique qui n’élimine que la zone affectée de la feuille.
o La délamination, par laquelle une moitié longitudinale de la feuille est enlevée en raison d’une
forte infection de la zone foliaire.
o Au minimum, une défoliation sanitaire hebdomadaire ou due au sigatoka doit être effectuée afind’éviter l’accumulation de tissus nécrosés affectés par le champignon sigatoka ; si nécessaire,deux cycles de défoliation par semaine doivent être exécutés.

•Lutte biologique : Les souches QST 713, FZB24, MBI600 et D747 de Bacillus amyloliquefaciens (sin. B. subtilis)
ou Melaleuca alternifolia (FRAC, 2018)•

Seuil :o Position de la strie sur la feuille 8 (HJE)o Position de la tache tardive sur la feuille 12 (HJMT)o Nombre de feuilles jusqu’à la floraison ou la parturition 12
o Nombre de feuilles à récolter 6 feuilles
o 5. Gravité de la maladie supérieure à 1

31 Source: Ronny Mancilla, 201932 Source: Ronny Mancilla, 2019

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Moko ou flétrissement bactérien (Ralstonia solanacearum)
Informations générales
Cette importante maladie du bananier est causée par la bactérie Ralstonia solanacearum race 2, qui est un
habitant naturel du sol. Les bananes triploïdes sont attaquées par au moins quatre types de race 2 : D ou
distorsion, B ou Bananes, SFR (Semi-Fluid Round) et H.

Symptômes externes du Moko.
(Source : Tiré de Dita, 2020.)•

Symptômes : Comme il s’agit d’une maladie systémique, les symptômes peuvent apparaître àn’importe quel stade phénologique de la culture et tous les organes du plant, des racines au régime,
peuvent être infectés et présenter des symptômes. Les symptômes externes consistent en un
flétrissement et un jaunissement du plant, les jeunes feuilles se dessèchent et se brisent sans tomber duplant et la feuille de cigare souffre de nécrose. Les drageons et les repousses des plants malades
peuvent rester petits, tordus et noircis. Les bords des feuilles se dessèchent et une strie jaune intenses’ensuit. Régimes et doigts déformés, certains fruits mûrissent prématurément, et les doigts se fendent
lorsque le régime est très développé. Le bourgeon mâle se dessèche, suivi de la tige jusqu’à ce que lerégime entier se dessèche (Alarcón y Jiménez, 2012).

•

Dégâts : Le Moko est l’une des principales maladies qui attaquent les cultures de bananiers et peutcauser de grandes pertes économiques s’il n’est pas géré de manière adéquate. Le Moko détruit lerégime et empêche le plant d’achever son cycle végétatif. (Martínez y García, 2004, cité par Álvarez
et al., 2013).

•

Conditions prédisposantes : Cette bactérie est transmise ou disséminée par des outils infestés utilisés
dans les pratiques culturales, par des insectes vecteurs, par le transport de résidus de culture ou dematériaux infectés et de sols infestés, par le contact de racines de plants malades avec des plants
sains causés par des populations de nématodes se déplaçant d’un plant à l’autre, et par laplantation dans des zones infestées. La bactérie peut se disséminer par le ruissellement de l’eau dansles canaux, les rivières et les ruisseaux, par les machines, les adventices hôtes et, en général, tout
milieu mobile introduit par l’homme (Alarcón et Jiménez, 2012 ; Álvarez et al., 2013).

•

Prévention : Les mécanismes de prévention disponibles sont l’utilisation de semences propres, ladésinfection des chaussures et des outils des travailleurs et des visiteurs au moment de la défoliation,l’élimination de la végétation34 hôte et la signalisation des sites touchés (Mesa et Triviño, 2007, cité parÁlvarez et al., 2013).

Maturation prématurée due au Mokodans un régime de bananes.
(Source : Dossiers personnels, 2001. )34 Voici les adventices porteuses du variant causant des dommages aux cultures :Heliconia latispatha, H. caribae, H. acuminata, H. imbricata, H. bihai, Brassica campestris, Datura stramonium, Solanum caripense, Solanum nigrum, Cyphomandra betacea, Lycopersicum sculentum, Photomorpe peltata & Physalis anguiata.

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•

Lutte mécanique : Éradication des plants présentant des symptômes de la maladie. L’éradication descas de Moko consiste à éliminer le malade et tous les plants voisins dans un rayon de 5,5 mètres.
Chaque plant malade dans un rayon de 5,5 mètres provoquera un nouveau cas, donc les nouveauxplants dans un rayon de 5,5 mètres doivent être éliminés.

•Lutte non chimique : Arenas et al., 2004, cités par Álvarez et al., 2013, ont déterminé que la population
bactérienne de R. solanacearum pouvait être réduite de 84,7 % en ajoutant des fleurs de soucifrançais (Tagetes patula) au sol. En outre, les bactéries pathogènes dans le sol ont été réduites demanière significative après l’application d’autres sources, comme une lutte de 58,2 % avec un engrais
liquide (composé de 2,7 % d’azote total, de 1,7 % de phosphore, de 5 % de potassium, de 12 %d’acides fulviques et de 5 % de substances humiques) ; une réduction de 50,8 % après l’ajout deCalfos et de 31,6 % avec le lixiviat de compost de pédoncule de banane.

•

Seuil : L’apparition d’un seul plant nécessite son éradication. La quarantaine doit être mise en placelorsque 5 cas ou plus dans une même zone apparaissent dans une période de 6 mois ou moins.

Symptômes internes du Moko
(Source : Dita, 2020.)

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Fusarium (Fusarium oxysporum f.s. cubensi race 4) (R4T)
Dita et al. (2017) indiquent que le flétrissement fusarien des Musaceae (également connu
sous le nom de maladie de Panama en raison de son impact au début du XXe siècle danscette région) est causé par le champignon Fusarium oxysporum f. sp. cubense (Foc). Il s’agit
de la maladie la plus destructrice des Musaceae (la famille comprenant les bananes et lesplantains) et elle est considérée comme l’une des dix maladies les plus importantes del’histoire de l’agriculture. En Amérique, la race 1 a déclenché une épidémie qui a eu unimpact sur l’industrie d’exportation de la banane, basée sur la variété Gros Michel, et a
provoqué la destruction par United Fruit de plus de 379 000 hectares uniquement en
Amérique centrale (May et Plaza, 1958 ; Stover, 1972) avec un impact économiqued’environ 2300 millions de dollars US dans les années 50 et 60. La substitution du « Gros
Michel » par des clones résistants du sous-groupe Cavendish, qui représente actuellement laquasi-totalité des bananes d’exportation plantées en Amérique, était la seule solution à ce
problème.
Pendant longtemps, les clones du sous-groupe Cavendish ont été affectés par le pathogène
uniquement dans des conditions de stress nutritionnel et de basse température, telles quecelles observées chez les bananes cultivées dans les régions subtropicales. Cependant, audébut des années 90, une nouvelle race a été signalée en Asie du Sud-Est, connue sous lenom de race tropicale 4 (R4T), qui attaque sévèrement les variétés du sous-groupe
Cavendish dans des conditions tropicales. La dissémination rapide de cette race et son
pouvoir pathogène constituent une menace sérieuse pour l’industrie bananière d’Amériquelatine et des Caraïbes. Un autre facteur à prendre en compte est que le Foc R4T peut
affecter d’autres variétés importantes pour la sécurité alimentaire et la génération derevenus, en dehors des variétés du groupe Cavendish, parmi lesquelles on peut citer lessuivantes : plantains (AAB), bananes à cuire Bluggoe (ABB), Gros Michel (AAA), Prata (AAB)et Manzano (AAB). Compte tenu de ce qui précède, l’introduction de Foc R4T en Colombie
en 2019 met évidemment en péril le reste du continent américain, une menace qui pourrait
avoir un impact sur la sécurité alimentaire de la région.
En Asie du Sud-Est, de vastes zones plantées de variétés du sous-groupe Cavendish ont été
touchées par le Foc R4T, causant des pertes de plusieurs millions. Les dommages ne sont pas
seulement associés aux pertes dues aux plants malades, mais aussi au coût des mesures degestion nécessaires et des changements technologiques dont la mise en œuvre a été
requise pour minimiser l’impact des maladies.
L’exclusion (empêcher l’entrée) est la meilleure option pour éviter l’impact de Foc R4T dansla production de Musaceae dans un pays donné. Une fois que ce ravageur a envahi une
zone, des mesures phytosanitaires sévères doivent être mises en œuvre pour empêcher ledéplacement des agents pathogènes des zones infectées vers les zones non infectées. Ces
mesures strictes sont coûteuses et nécessitent un personnel qualifié pour la reconnaissanceet la gestion des ravageurs.
Symptômes du flétrissement fusarien
Le terme et le concept de race ont été utilisés pour classer les souches de F. oxysporum f. sp.
cubense après les années 1950 (Stover, 1962). Les races de Foc ont été nommées sur la base
du pouvoir pathogène des différentes variétés de référence dans des conditions de terrain.
Quatre races pathogènes de Foc ont été décrites (Stover y Waite, 1960 ; Stover, 1962 ;Moore et al., 1993 ; Su et al., 1998).
La race 1 attaque les clones Gros Michel (AAA), Manzano (Silk, AAB), Pome (AAB) et
Latundan ; la race 2 affecte Bluggoe et d’autres clones du génome ABB ; la race 3, qui aété décrite précédemment (Stover, 1962 ; Waite y Stover, 1960) attaque l’héliconia(Heliconia spp.) ; et la race 4 est pathogène pour Cavendish et tous les cultivars sensibles
aux races 1 et 2 (Dita et al., 2017).

116

Les symptômes typiques du flétrissement fusarien résultent d’un stress hydrique sévère causépar le colmatage du xylème et de la combinaison d’activités pathogènes telles quel’accumulation de mycéliums, la production de toxines et/ou les réponses de défense del’hôte, notamment la production de tylose et de gomme et l’écrasement des vaisseaux en
raison de la croissance associée des cellules parenchymateuses (Beckman, 1990 ; Xiao et al.,2013).
Les différentes races de Foc provoquent des symptômes similaires chez les Musaceae ; lesraces ne peuvent donc pas être différenciées sur la base de la symptomatologie (Stover,
1962 ; Ploetz, 1990 ; Ploetz y Pegg, 2000).
La maladie se caractérise par deux types de symptômes externes : le « syndrome » de lafeuille jaune et le « syndrome » de la feuille verte (Stover, 1962 ; Pérez-Vicente, 2004).
Le « syndrome » de la feuille jaune : il s’agit du symptôme externe le plus classique et le plus
distinctif du flétrissement fusarien du bananier. Au début du processus d’infection, il secaractérise par le jaunissement des bords des feuilles les plus anciennes (ce symptôme peutêtre initialement confondu avec une carence en potassium, en particulier dans desconditions sèches ou froides). Le jaunissement des feuilles progresse des feuilles les plus
anciennes aux plus jeunes. Finalement, le pétiole se plie et les feuilles s’affaissent ou, le plus
souvent, les feuilles se déforment vers la veine centrale et s’accrochent autour de la pseudotige, formant une jupe de feuilles mortes.
« Syndrome » de la feuille verte : Contrairement au syndrome de la feuille jaune, danscertains clones, les feuilles des plants affectés restent principalement vertes jusqu’à ce queles pétioles se plient et que les feuilles s’effondrent.
En général, les feuilles les plus jeunes sont les dernières à présenter des symptômes et restentsouvent dressées, donnant à la plante un aspect « hérissé ». Un plant infecté continue decroître et les feuilles émergentes sont généralement plus pâles que les feuilles saines. Le limbe
des feuilles émergentes peut être nettement réduit, ridé et déformé. Des fissures
longitudinales peuvent se développer dans la pseudo-tige. Il n’y a aucune preuve desymptômes dans les fruits.
Les symptômes internes se caractérisent par une coloration vasculaire qui commence par lejaunissement des tissus vasculaires des racines et des cormes, puis évolue vers la formationd’un faisceau vasculaire à coloration continue jaune, rouge ou brun gris dans la pseudotige, ce qui est typique de la maladie. Chez les clones très sensibles, on peut observer desfaisceaux colorés sur les pétioles des feuilles.
Dans certains cas, le flétrissement du Fusarium causé par le Foc a été confondu avec leflétrissement bactérien de Moko causée par la race 2 de Ralstonia solanacearum. Les
critères suivants peuvent être utilisés pour différencier ces deux maladies :

•

•

•
•

Dans le cas du flétrissement fusarien, les symptômes progressent des feuilles lesplus âgées aux plus jeunes. Dans le cas du flétrissement bactérien ou du Moko,
les symptômes progressent généralement des feuilles les plus jeunes aux feuilles
les plus âgées ;Dans le cas du flétrissement bactérien, les jeunes drageons émergeant durhizome sont déformés et pourris et peuvent mourir. Dans le cas du flétrissement
fusarien, les jeunes drageons et les drageons en croissance ne présentent aucun
symptôme.
Pour le Moko, on observe une exsudation bactérienne dans tous les tissus lors dela coupe (racines, pseudo-tige, tige, fleurs et rhizome, etc.). Dans le cas duflétrissement fusarien, il n’y a pas d’exsudation.
Dans le cas du Moko, on observe une nécrose interne et une pourriture du fruit,tandis que dans le cas du Fusarium, aucun symptôme n’est apparent dans lefruit. (Dita et al., 2017).

Prévention

117

Lignes d’action pour empêcher l’introduction des agents pathogènes dans les exploitations(exclusion) :Le Foc R4T peut rester dans le sol pendant plusieurs décennies, même si les bananes ne sont
pas cultivées. Actuellement, il n’existe pas de mesures efficaces connues pour l’éradication
des sols contaminés (Ploetz 2018, cité par Guzmán et al., 2018). Les pays qui sont encore
exempts de cette race pathogène peuvent continuer à l’être grâce à des efforts conjoints
d’exclusion de l’agent pathogène. La mise en œuvre de mesures de prévention de basedans les exploitations, telles que les suivantes, peut contribuer de manière substantielle à
réduire le risque d’entrée et de dissémination :
•
•
•
•

•
•
•

•
•
•
•
•

•
•

•
•

Biosécurité agricole
Utilisation de matériel de plantation exempt de maladies
Gestion des facteurs biotiques favorisant la maladie, tels que les attaques de charançons
et de nématodes
Gestion des facteurs abiotiques du sol, pH, nutrition [P, Ca, Zn & N], silicium, utilisation desources d’azote qui augmentent le NO3 et réduisent le NH4, calcium, puisque leblanchiment augmente la suppression du sol et réduit la germination deschlamydospores (Höper et al., 1995 ; Peng et al., 1999) ; fer, puisque la réduction de ladisponibilité augmente le caractère suppressif du sol (Scher y Baker, 1982) et réduit lagermination des chlamydospores (Peng et al., 1999), entretien adéquat du réseau dedrainage.
Fertilisation orientée vers la santé du sol (matière organique + micro-organismesbénéfiques qui suppriment l’agent pathogène et/ou favorisent la croissance des plants,etc.), compost, engrais verts.
Les sols acides (pH <5,0) sont plus favorables à la maladie ; un pH supérieur à 5,6 est
moins optimal pour le champignon.
Actuellement, il n’existe pas sur le marché de variétés ou d’hybrides tolérants et/ou
résistants qui fournissent des fruits de qualité suffisante et acceptable pour lacommercialisation. À Taïwan, on utilise les somaclones GCTV 119 et GCTV 218 qui
présentent une résistance partielle, mais qui sont réinfectés au fil du temps.
Rotation des cultures avec des plantes non hôtes pour le Foc R4T, bien que cettepratique ne soit pas possible dans les plantations commerciales.
Utilisation de cultures de couverture (Dita, 2020).
Tenir un registre à jour de toutes les personnes entrant dans l’exploitation agricole.
Interdire aux personnes non autorisées d’entrer dans l’exploitation et interdire l’entrée
aux personnes qui ont séjourné dans des pays où le Foc R4T est présent au cours des trois
derniers mois.
Si, pour une raison quelconque, il est strictement nécessaire qu’une personne tellequ’indiquée ci-dessus entre dans l’exploitation, elle doit respecter un protocole debiosécurité, à savoir : utilisation de chaussures fournies par l’exploitation, vêtements
propres et interdiction d’introduire des outils ou du matériel ayant été utilisés
précédemment dans des pays touchés par le Foc R4T, le tout devant néanmoins êtredésinfecté au préalable. Tous les outils doivent être fournis par l’exploitation.
Les limites vulnérables de l’exploitation et l’entrée principale doivent être protégées pardes clôtures ou des défenses afin que les personnes se déplacent uniquement dans deszones sûres.
Aux principaux points d’entrée de l’exploitation (y compris l’usine de conditionnement),
l’utilisation de pédiluves pour la désinfection des chaussures doit être obligatoire et ceuxci doivent être maintenus propres et en bon état. En outre, il est fortement recommandéd’établir des sites de désinfection des véhicules (bains de pneus) et des tunnels sanitaires.
Avant d’entrer dans une exploitation, les visiteurs doivent changer leurs chaussures pourdes bottes hautes en caoutchouc fournies par l’exploitation, qui ont été dûment
nettoyées et désinfectées et qui, de préférence, ne sont pas de couleur noire.
Les travailleurs doivent être formés aux méthodes de prévention de la maladie. Les
instructions doivent inclure la désinfection obligatoire des outils avant de se rendre aux
dossiers et périodiquement pendant la journée de travail. La désinfection de la lame etdu manche des outils doit être envisagée, ainsi que celle des autres ustensiles tels que lesgaines, les limes, les cordes et les ficelles, les piquets, entre autres. Les outils doivent être

118

•

•
•

utilisés exclusivement dans l’exploitation ; il est donc interdit de les sortir de l’exploitation,
sauf si cette pratique est dûment autorisée et si des mesures de biosécurité ont été prises.
Les travailleurs doivent être formés et informés des symptômes de la maladie. Ils doivent
avoir pour instruction d’informer les administrateurs de l’exploitation si un plant présentant
des symptômes similaires à ceux du Foc R4T est détecté et de leur indiquer la procédure
à suivre. Les travailleurs ne doivent jamais couper un plant suspect.
Tout type de machine ou d’équipement agricole devant être utilisé dans la plantation
doit être soigneusement lavé et désinfecté avant d’entrer ou de sortir de l’exploitation.
Les désinfectants dont l’efficacité contre l’agent pathogène a été prouvée doivent êtreutilisés pour désinfecter les outils, les machines et les équipements agricoles ainsi quedans les bains de pieds (Tiré de Guzmán et al., 2018).

119

Dose recommandée (mg/L)1
Effet résiduel jusqu’à sept jours
Type de désinfectant

À utiliser pour la désinfection
des outils

À utiliser pour les bains de piedset la désinfection du matériel
agricole

Ammonium quaternaire

2 000

4 000

Iodophore

2 000

4 000

Glutaraldéhyde

1 000

3 000

1/. Doses recommandées pour leur efficacité à éliminer les chlamydospores, sur la base d’études réalisées par

CORBANA sur la race 1 du Foc, avec des concentrations élevées d’inoculum, de sol et de matière organique.
Source : Guzmán et al., 2018.

Suivi
Cette activité est réalisée uniquement et exclusivement dans les pays et/ou exploitations
ayant le Foc R4T afin de caractériser l’incidence du Foc R4T dans les zones infectées (Dita etal., 2017). Cependant, chaque exploitation devrait disposer d’un personnel technique formé
aux symptômes du Foc R4T afin que les plants présentant des symptômes similaires à cettemaladie soient rapidement détectés (plants suspects). Ces plants doivent être isolés etconfinés pour prévenir le risque de dissémination du champignon et les autorités du ministèrede l’agriculture de chaque pays doivent être immédiatement informées afin que le diagnostic
moléculaire de confirmation puisse être effectué.
Lutte et intervention Tout comme le suivi, les activités de lutte sont menées uniquement et
exclusivement dans les pays et/ou les exploitations ayant le Foc R4T, afin de contenir, desupprimer et d’éradiquer les cas de Foc R4T détectés (Dita et al., 2017).
Pour plus d’informations sur le suivi, la lutte et l’intervention, le document de l’OIRSA est
recommandé comme base d’un plan d’urgence face à un foyer de la race tropicale 4 (Foc
R4T). Ce texte très complet comprend toutes les directives juridiques, techniques etscientifiques pour la gestion du Foc R4T, avec des mesures d’exclusion, de suppression etd’éradication. Ce document a été préparé et est fréquemment mis à jour par desprofessionnels experts de cette maladie. Il est disponible sur :https://www.oirsa.org/contenido/2018/Sanidad_Vegetal/Manuales OIRSA 20152018/Plan_conting_FOC_R4T_2017-V2-Final-FEB18-2017.pdf

120

Image 1 : Symptômes externes de flétrissement fusarien chez le bananier.

A. Plant présentant une chlorose généralisée sur les feuilles (« syndrome de lafeuille jaune ») à un stade avancé de la maladie.
B. Fissures à la base de la pseudo-tige.
C. Plant affecté par le flétrissement de Fusarium avec des feuilles vertes(« syndrome » de la feuille verte »).
D. Vue détaillée de feuilles se détachant à la base du pétiole.
(Source : tiré de Dita et al., 2017)121

Image 2 : Symptômes internes de flétrissement fusarien chez le bananier.

A. Coupe transversale du corme (rhizome) montrant la nécrose des tissus.
B. Coupe transversale de la pseudo-tige, montrant une nécrose avancée dutissu vasculaire.
C. Section longitudinale de la pseudo-tige, montrant la nécrose des faisceaux
vasculaires.
Image 3 : Infographie des symptômes du Foc R4T
Fusarium de la race tropicale 4 (Foc R4T)

Symptômes

Jaunissement desfeuillesLes feuilles
affectéessontcomplète
ment
flétries etpendent

On observe
une colorationinterne brune

La base de lapseudo-tige
peut se fissurer

Si l’un de ces symptômes est suspecté, contactez immédiatement leministère ou le secrétariat de l’agriculture de votre pays,

Source : Infographie du cours OIRSA 2019 Foc R4T

122

Références
Alarcón, J ; Jiménez, Y. 2012. Manejo fitosanitario del plátano (Musa spp.): Medidas para latemporada invernal. Instituto colombiano agropecuario. Bogotá, Colombia. 51 p.
Álvarez, E ; Pantoja, A ; Gañan, L ; Ceballos, G. 2013. Estado del arte y opciones de manejodel moko y la sigatoka negra en América Latina y el caribe. CIAT/FAO. Cali, Colombia. 45 p.
Cubillo, D. 2013. Manejo integrado de plagas: conceptos y aplicaciones. Chemplast
International Corp., San José, Costa Rica. 105 p.
Cubillo, D. 2013. Manual para el conocimiento y manejo de las principales plagas insectiles
en el banano orgánico. III curso internacional de banano orgánico. Piura, Perú. 24 p.
Dita, M. 2020. Marchitez por Fusarium de las musáceas. Detección y Diagnóstico raza 4
tropical – R4T. III jornada fitosanitaria virtual. Taller de capacitación regional sobre lamarchitez por Fusarium de las Musáceas, raza 4 tropical. OIRSA. 58 p.
Dita, M. 2020. Marchitez por Fusarium, raza 4 tropical: escenarios y alternativas de manejo. III
jornada fitosanitaria virtual. Taller de capacitación regional sobre la marchitez por Fusariumde las musáceas, raza 4 tropical. OIRSA. 76 p.
Dita, M ; Echegoyen, P ; Pérez, L. 2017. Plan de contingencia ante un brote de la raza 4
tropical de Fusarium oxysporum f.sp. cubense en un país de la región de OIRSA. OIRSA. San
Salvador, El Salvador. 211 p.
Dita, M ; Pérez, L. 2013. Mal de Panamá: historia, síntomas, conceptos de razas, importancia
económica, situación actual de la raza 4 tropical. Curso de capacitación sobre diagnósticoy manejo del Mal de Panamá de las musáceas (Fusarium oxysporum f.sp. cubense) creando
capacidades para la prevención de la entrada y detección temprana de la raza 4 tropical.
Santa Marta, Colombia. 68 p.
FRAC, 2018. Minutas de la reunión del grupo de trabajo de banano. Miami, USA. 21 p.
González, M ; Cubillo, D. 2014. Guía de manejo de plagas. Lista verde y amarilla. Cochinilladel banano. CABI/Chemplast/CATIE. Costa Rica. 1 p.
Guzmán, M ; Pérez, L ; Villalta, R ; Carr, C ; Sandoval, J. 2018. Marchitamiento por Fusarium
raza 4 tropical (Foc R4T) una seria amenaza para la producción de bananos y plátanos:
recomendaciones para prevenir el ingreso del patógeno en fincas bananeras. CORBANA.
Guápiles, Costa Rica. CORBANA 44(64):1-8. 2018. 8 p.
Guzmán, M. ; Paladines, R. (s.f.). Sigatoka negra. CropLife Latin America. Consultado 16 jul.
2020. Disponible en https://www.croplifela.org/es/plagas/listado-de-plagas/sigatoka-negra
Hernández, E ; Camero, A ; Velázquez, Y ; Ramos, C. 2011. La cochinilla de la platanera.
Agrocabildo. Islas Canarias. 6 p.
Meléndez, G. 2019. Manejo y prevención de cochinilla (Pseudococcus sp.) en el racimo debanano en la hacienda María José 1, zona de Babahoyo. Tesis Ingeniero Agrónomo.
Ecuador. Universidad Técnica de Babahoyo. 38 p.
Palma, M ; Blanco, M ; Guillén, C. 2019. Las cochinillas harinosas (Hemiptera:
Pseudococcidae) y su impacto en el cultivo de Musáceas. Agron. Mesoam. 30(1):281-298,
enero-abril, 2019. San José, Costa Rica. 18 p.
Pasapera, E. 2013. Manejo integrado de plagas en banano orgánico. MINAGRI. Piura, Perú.
13 p.
Palacino, J. 2020. Programa de control y manejo de Fusarium R4T. Lecciones aprendidas en
Colombia. III jornada fitosanitaria virtual. Taller de capacitación regional sobre la marchitez
por Fusarium de las musáceas, raza 4 tropical. OIRSA. 16 p.
Quintero, I ; Carbonó, E. 2015. Panorama del manejo de malezas en cultivos de banano enel departamento de Magdalena, Colombia. Revista colombiana de ciencias hortícolas, Vol.
9, No. 2: pp. 329-340.

123

124

ENNEMIS NATURELS DES RAVAGEURS ET MALADIES DU BANANIER (MUSA AAA).
Cochenilles farineuses/Planococcus citri Riss/Dysmicoccus brevipes Cokerell/Pesudococcus jackbeardsleyi Gimpel &Miller/Pesudococcus elisae Borchsenius/Ferrisa virgata Cokerell.
Cochenilles farineuses• Les cochenilles farineuses ont un grand nombre d’ennemis naturels, malheureusement l’application
généralisée de pesticides affecte les populations de ces agents de biocontrôle. Nous nous concentrerons
sur les ennemis naturels considérés comme les plus importants.

Cryptolaemus montrouzieri
adulte35•

Prédateurs : deux coccinelles, Cryptolaemus montrouzieri et Cycloneda spp. et un neuroptère (Chrysopa
spp.) (Cubillo 2013).

•

Cryptolaemus montrouzieri est une espèce polyphage. Les petites larves et les adultes préfèrent se nourrir
des œufs de cochenilles, tandis que les larves plus âgées ont une préférence pour tous les stades de vie
des cochenilles.

•

Cycloneda spp. : est une espèce polyphage, prédatrice vorace d’insectes à corps mou tels que lespucerons, les cochenilles, les acariens, les coccidés et les stades immatures des lépidoptères et deshomoptères, elle se nourrit également de miellat et de nectar de fleurs. Ces espèces sont dépendantes
de la densité et sont donc capables de passer d’une zone à une autre où les proies sont plus
abondantes. Elles préfèrent la face inférieure des feuilles, presque toujours à proximité d’une colonie depucerons ou d’autres ravageurs. C’est un prédateur d’insectes et un agent de lutte biologique très
efficace grâce à sa voracité, sa réponse fonctionnelle et sa réponse numérique. Sa chrysalide a lacapacité étonnante de « mordre » une proie potentielle40.

Cycloneda
spp.
adultes’attaquant à un puceron36

Chrysopes• Chrysopa spp : La voracité des larves en fait l’un des agents de lutte biologique les plus prisés dans lescultures agricoles41.
Chrysopa spp. adulte37•

Les larves de toutes les espèces et les adultes de certains genres sont des prédateurs et se nourrissentd’une grande variété d’insectes phytophages tels que les cochenilles, les pucerons, les aleurodes etautres insectes à corps mou présents sur le feuillage. C’est pourquoi certaines espèces sont actuellement

35 Source: controlbiologico.info - Cochinillas
36 Source: Google Image Search
37 Source: https://upload.wikimedia.org/wikipedia/commons/thumb/9/99/Chrysopa_perla01.jpg/250px-Chrysopa_perla01.jpg.
40 EcuRed 2020
41 Oswald et al., cited by Valencia et al. 2006125

produites en masse et relâchées dans le champ dans le cadre de la lutte biologique des ravageurs
agricoles42.

Larve de Chrysoperla spp.
s’attaquant à un puceron38

Allotropa musae adulte39•

Chrysoperla spp. : de la même famille que Chrysopa spp. Chrysoperla spp.

•

Ses larves ont été observées en train de s’attaquer à plus de soixante-dix espèces différentes d’insectes
appartenant à cinq ordres distincts. La plupart des proies appartiennent à l’ordre des Homoptères(ravageurs suceurs, dont les cochenilles farineuses).

•

Les adultes ne sont pas des prédateurs, mais se nourrissent de pollen et de substances sucrées.
Cependant, cette espèce a également été identifiée dans les cultures agricoles attaquant diverses
espèces de pucerons, tétranyques, thrips, aleurodes, œufs de chenilles, mineuses, psylles, petits papillons
et chenilles, larves de coléoptères. Elle est également considérée comme faisant partie des prédateurs
importants des cochenilles farineuses dans les serres.

•

Les prédateurs des cochenilles farineuses sont Hemerobius sp., Sympherobius maculipennis, Sympherobius
sp. (Neuroptera : Sympherobiidae), Scymnus nitidus, Hyperaspis funesta (Coleoptera : Coccinellidae).43•

Parasitoïdes : des familles d’Encyrtidae (ex. Anagyrus spp., Acerophagus spp. et Leptomastix spp.),
Platygasteridae (ex. Allotropa spp.)44•

Allotropa musae est un parasitoïde non disponible dans le commerce. Décrit pour la première fois en
2004, il parasite les premiers stades de croissance du ravageur et on le trouve le plus souvent sur lespétioles et les feuilles.45.

38 Source: https://upload.wikimedia.org/wikipedia/commons/thumb/e/ee/Chrysoperla_carnea_larva02.jpg/220px-Chrysoperla_carnea_larva02.jpg.
39 Source: Hernández 2011.
42 New, Adams & Penny, Hunter, Arredondo, cited by Valencia et al., 2006.
43 New, Adams & Penny, Hunter, Arredondo, cited by Valencia et al., 2006
44 Hernández, 2011; Waterhouse, cite par Cubillo 201345 Hernández, 2011; Waterhouse, cite par Cubillo 2013126

Cochenilles/Diaspis boisduvalli Signoret/Aspidiotus destructor Signoret/Chrysomphalus aonidium Linn.
•

Parasitoïdes : Les hyménoptères de la famille des Aphelinadae tels que Aphytis sp., Coccobius sp.,et de la famille des Encyrtidae, par exemple Plagiomerus sp 49•

Aphytis sp. : sont des ectoparasitoïdes qui placent un œuf sous le bouclier des cochenilles et descochenilles farineuses, le déposant sur le corps de la victime après l’avoir paralysé. En outre, une
grande partie des Diaspis meurent directement lorsque le parasite les perce avec son ovipositeur,dans le but de se nourrir des fluides qui proviennent de la blessure qu’il vient de causer. Cette
action prédatrice (morsures nutritionnelles) constitue une étape très importante dans le domainede la lutte contre Diaspis.

•

Prédateurs : coccinelles prédatrices Cryptolaemus montrouzieri, Pentilia spp. et Delphastus spp.
(Coleoptera : Coccinelidae) et les chrysopes Chrysoperla sp. et Ceraeochrysa spp. 50•

Entomopathogènes : Beauveria bassiana : Capable d’infecter plus de 200 espèces d’insectes. Il est
d’aspect poudreux, d’un blanc cotonneux ou d’une couleur jaune crème.

•

Les spores du champignon se posent sur la cuticule de l’insecte, germent et pénètrent la cuticule
et le champignon pénètre dans les tissus mous de l’insecte. Une fois à l’intérieur de l’insecte, lechampignon ramifie ses structures et colonise les cavités de l’hôte. Il commence alors à produire
une toxine appelée Beauvericine qui contribue à briser le système immunitaire de l’hôte, ce qui
facilite l’invasion de tous les tissus par le champignon. Après la mort de l’insecte, le champignon
multiplie ses unités infectieuses (hyphes) qui croissent simultanément, et finissent par envahir tous
les tissus de l’insecte et deviennent résistants à la décomposition, apparemment grâce aux
antibiotiques sécrétés par le champignon.51

Aphytis sp. adulte46

Pentilia spp.adulte47

Insecte parasité par Beauveria bassiana48

46 Source: http://gipcitricos.ivia.es/wp-content/uploads/2010/07/A.-melinus-1-206x155.jpg
47 Source: Google Image Search
48 Source: Google Image Search
49 Cubillo 2013; Solano 2019
50 Guillén et al., Guillén and Laprade, cited by Solano 2019; Cubillo 2013
51 INTAGRI 2020

127

Charançon du bananier/Cosmopolites sordidus Germar.

Tetramorium guineense adulte53
Plaesius javanus adulte52

Charançon noir adulte (C. sordidus) parasitépar Beauveria bassiana54•

Les larves d’insectes ont les prédateurs suivants : Plaesius javanus, Hololepta quadridentada (Coleoptera : Histeridae) et
Dactylosternum hydrophiloides (Coleoptera : Hydrophilidae), les fourmis : Pheidole megacephala, P. guineense, Azteca sp. et
Tetramorium guineense (Hymenoptera : Formicidae).55•

Plaesius javanus : est considéré comme originaire de l’Asie du Sud-Est, plus précisément des îles qui composent l’Indonésie, commeJava et Sumatra. P. javanus a été introduit dans de nombreux pays d’Asie, d’Afrique et des Amériques. Il a été relâché dans la naturedans 29 pays ou îles, et il s’est établi dans 12 de ces pays (41,4 %) : (Île) Cock, Fidji, Guam, Jamaïque, (îles) Mariannes, Mexique,
Nouvelle-Calédonie, Porto Rico, Samoa, Tahiti, Tonga et Trinidad. P. javanus peut consommer jusqu’à huit larves entièrement
développées de C. sordidus par jour.56•

D’après des tests en laboratoire, les larves et les adultes de P. javanus ont attaqué 75 à 88 % des larves et 38 à 53 % des pupes de C.
sordidus placées dans des tunnels fabriqués artificiellement dans des parties de plants57. Cependant, les tentatives d’introduction deces ennemis naturels dans d’autres régions bananières ont été largement infructueuses. La recherche sur les prédateurs endémiques(coléoptères et perce-oreilles) en Afrique ne suggère qu’un potentiel limité de lutte dans des conditions réelles58.

•

Tetramorium guineense : les fourmis sont capables de localiser et de s’attaquer à certaines larves de C. sordidus59 .

52 Source: Google Image Search
53 Source: Google Image Search
54 Source: Ramírez y Torres 2016.
55 Sirjusingh et al. and Sponagel et al., cited by Cubillo 2013; Gold and Messiaen 2000
56 Jepson, cited by Arredondo and Rodríguez 2015
57 Arredondo and Rodríguez 2015
58 Gold and Messiaen 2000
59 Castañeda 2016

128

•

Les nématodes entomopathogènes (EPN), Steinernema spp. et Heterorhabditis spp. attaquent aussi bien les charançons adultes que
les larves sur le terrain (Gold et Messiaen 2000). La diversité des souches isolées présente un large éventail d’hôtes. La capacité desEPN à éliminer les insectes nuisibles en 24 à 48 heures, ainsi que le développement de formulations commerciales, en font une
alternative pour lutter contre C. sordidus dans les bananeraies60 . Cependant, comme les EPN peuvent être affectés par les conditions
environnementales, telles que la température, le rayonnement solaire (rayons UV) et les caractéristiques du sol comme l’acidité, lamatière organique et la texture (61), des stratégies sont nécessaires pour améliorer leur survie sur le terrain, comme l’utilisation dedifférentes méthodes d’encapsulation62 ou l’isolement de souches adaptées aux conditions de l’écosystème agricole.

•

Champignons entomopathogènes : Cordyceps bassiana, Beauveria bassiana Bals et Metarhizium anisopliae Metch sont des agentsde lutte biologique contre l’insecte63. B. Bassiana est un champignon entomopathogène actuellement utilisé en application générale
dans la culture, placé dans des pièges ; cette méthode donne les meilleurs résultats d’infection et de lutte 64.

•

D’autres prédateurs de larves et d’œufs signalés sont Euborellia annulipes Lucas (Dermaptera : Carcinophoridae) et Labia borelli Burr
(Dermaptera : Labiidae)65 , Ontophagus sp. (Coleoptera : Scarabaeidae)66, Eutochia sp., (Coleoptera : Tenebrionidae)67,.

60 Kaya; Hiltpold, cited by Vidaurre et al., 2020
61 Bedding; Andaló et al., cited by Viaduarre et al., 2020
62 Peters; Bogantes, Flores, Castellón, and Uribe, cited by Vidaurre et al., 2020
63 Contreras, Carballo cited by Cubillo 2013; Maharaj & Khan; González et al., cited by Vidaurre et al., 2020
64 Navas 2011
65 Koppenhöfer, Tinzaara et al., cited by Navas 2011
66 Cubillo et al., Ríos et al., cited by Navas 2011
67 Castrillo, cited by Navas 2011129

Nématodes/Radopholus similis (Cobb) Thorne/Pratylenchus coffeae Sher & Allen/Helicotylenchus multicinctus Cobb/H. dihysteria
Cobb/Meloidogyne incognita (Kofoid et White) Chitwood/Meloidogyne javanica (Treub) Chitwood,a) l’adhésion des conidies au nématode,b) la germination des conidies, c) la pénétration,d) la colonisation du corps du nématode par le champignon,e) la croissance externe et la production de conidies68

Action antibiologique du champignon endophyte sur le nématode.69•

Meloidogyne javanica (Treub) Chitwood, champignon qui parasite les œufs, les adultes et les kystes des nématodes. Il peut également
affecter les nématodes mobiles qui se trouvent à l’extérieur des racines. De cette façon, il peut infecter le nématode à n’importe quel
stade, provoquant la mort ou empêchant le nématode d’achever son cycle de vie, réduisant ainsi les populations dans le champ 70 .

•Il a été démontré que des espèces de Bacillus, telles que B. firmus et B. subtilus, et des souches de la bactérie Pseudomonas
fluorescens inhibent l’invasion des racines de bananiers par R. similis 71.

•

Des essais sur l’utilisation et l’inoculation de champignons endophytes (Trichoderma spp. et Fusarium spp.) dans des plants in vitro enserre ont donné des résultats très prometteurs. Meneses (2003) et Morales (2014) ont montré que les champignons endophytes
Trichoderma spp. et Fusarium spp. réduisaient les populations de R. similis de 75 à 100 %, et ont obtenu de meilleurs résultats en
combinant les deux.

68 Source: Monzón et al., 2009.
69 Source: Meneses 2003.
70 Monzón et al., 2009
71 Aalten et al.; Mendoza and Sikora, cited by Coyne and Kidane 2019130

Adventices/genres et espèces variés.
Il n’y a pas de références connues d’utilisation pratique de la lutte biologique contre des adventices
spécifiques du bananier et du plantain, mais ces cultures pourront éventuellement en bénéficier lorsque lesrecherches actuelles identifieront des prédateurs ou des pathogènes pour la lutte contre Chromolaena
odorata, Mikania micrantha H.B.K. et celle d’autres adventices73.
La lutte biologique contre les adventices utilise des ennemis naturels qui se nourrissent du plant, y compris,mais sans s’y limiter, des insectes, des acariens et des nématodes. Il est également possible de lutter contre
les adventices par le biais de maladies causées par des champignons 74 .

Exemple de lutte biologique dansd’autres cultures. Symptômes de lamaladie causée par le Fusarium
oxysporum FOXY 2 sur des tiges de Striga
hermonthica (à droite) et lutte (àgauche).72

Meloidogyne javanica (Treub) Chitwood, champignon qui parasite les œufs, les adultes et les kystes desnématodes. Il peut également affecter les nématodes mobiles qui se trouvent à l’extérieur des racines. Decette façon, il peut infecter le nématode à n’importe quel stade, provoquant la mort ou empêchant lenématode d’achever son cycle de vie, réduisant ainsi les populations dans le champ 76.
Il a été démontré que des espèces de Bacillus, telles que B. firmus et B. subtilus, et des souches de labactérie Pseudomonas fluorescens inhibent l’invasion des racines de bananiers par R. similis77 .

Action antibiologique du champignon
endophyte sur le nématode.75

Des essais sur l’utilisation et l’inoculation de champignons endophytes (Trichoderma spp. et Fusarium spp.)
dans des plants in vitro en serre ont donné des résultats très prometteurs. Meneses (2003) et Morales (2014)
ont montré que les champignons endophytes Trichoderma spp. et Fusarium spp. réduisaient les populations
de R. similis de 75 à 100 %, et ont obtenu de meilleurs résultats en combinant les deux.

72 Source: Elzein y Kroschel 2004
73 Terry 1996
74 FAO 2004
75 Source: Meneses 2003.
76 Monzón et al., 2009
77 Aalten et al.; Mendoza and Sikora, cited by Coyne and Kidane 2019131

Sigatoka noir Mycosphaerella fijiensis Morelet.
•

Bacillus subtilis78••
Bacillus pumilus80

Bacillus subtilis QST-713 (sin. B. amyloliquefaciens) : Biofongicide à action protectrice et de contact.
Les lipopeptides, substances issues de la fermentation des bactéries, détruisent les membranes
cellulaires des structures fongiques (brisant le tube germinatif et le mycélium du champignon). Ellescréent également une zone d’inhibition dans la feuille, empêchant l’attaque des pathogènes etstoppant la croissance des pathogènes en compétition pour les nutriments et l’espace à la surface
de la feuille. Elles s’attaquent exclusivement aux organismes cibles, ce qui le rend sans danger pourles poissons, les pollinisateurs et autres organismes bénéfiques. En raison de son origine naturelle,ce produit est inoffensif pour l’homme, et il n’a aucune restriction d’utilisation par rapport au
nombre d’applications, il permet également de réduire la charge chimique de la culture 79.
Bacillus pumilus QST-2808 : Biofongicide à action protectrice et de contact. Il inhibe lechampignon en produisant un sucre aminé qui interrompt le métabolisme cellulaire et détruit lesparois cellulaires de l’hôte. Il crée également une zone d’inhibition à la surface du plant,empêchant les champignons de s’installer, stoppant la croissance par la concurrence desnutriments et de l’espace à la surface des feuilles. Elles s’attaquent exclusivement auxorganismes cibles, ce qui le rend sans danger pour les poissons, les pollinisateurs et autresorganismes bénéfiques. En raison de son origine naturelle, ce produit est inoffensif pour l’homme,
et il n’a aucune restriction d’utilisation par rapport au nombre d’applications, il permetégalement de réduire la charge chimique de la culture 81.
D’autres agents de biocontrôle sont à l’étude : les bactéries : Paenibacillus spp, Serratia spp etStreptomyces spp ; champignons : Trichoderma spp. et Rhizophagus irregularis.82 .

78 Source: Google Image Search
79 Bayer, 2018; Guzmán, 2012; Guzmán et al., 2019
80 Source: Google Image Search
81 Bayer, 2018; Guzmán, 2012; Guzmán et al., 201982 Guzmán, 2012; Guzmán, et al. 2019132

Sigatoka noir Mycosphaerella fijiensis Morelet.

Pseudomonas spp.83

Trichoderma spp.84

Il n’existe actuellement aucun agent de biocontrôle disponible dans le commerce contre la bactérie Moko. Les agents de biocontrôle encours d’étude sont :Petites populations de Ralstonia solanacearum race 2 (Smith), qui ont été observées dans des bananiers (Musa AAB Simmonds)85 et lesbactéries antagonistes86 .

83 Source: Google Image Search
84 Source: Google Image Search
85 Alexopoulus and Mims, cited by Ceballos et al., 201486 Guzmán et al., 2019133

TR4 Flétrissemment fusarien du bananier ou fusariose du bananier (Fusarium oxysporum f. Sp. cubense) — Foc.

Trichoderma spp.89
Croissance du champignon Fusarium spp sur milieu PDA (A et C). Chlamydospores deFusarium spp (B). Spores de Fusarium spp (D)87
88•

Il n’y a actuellement aucun agent de biocontrôle commercialisé visant à contrôler TR4 (Foc).

•

La nature pérenne du bananier et la nécessité d’une efficacité à long terme de ces moyens de lutte sont rarement prises en compte
lors de l’élaboration de stratégies de gestion de cette maladie. Une grande partie de la littérature sur ce sujet révèle les résultatsd’études à court terme in vitro ou en serre, sans que rien n’indique qu’elles se soient révélées utiles sur le terrain.

•

Par exemple, bien que de nombreuses études sur la lutte biologique aient été menées, aucun des résultats publiés n’indique qu’elle
serait utile en raison de sa rentabilité sur le terrain 90.

•

Agents de biocontrôle en cours d’étude : Il existe des preuves expérimentales que Trichoderma spp, Fusarium oxysporum non
pathogène et certaines espèces de bactéries ont un potentiel pour la lutte biologique de TR4. Toutefois, ces preuves ont été obtenues
dans des études réalisées in vitro et dans des serres91. La littérature scientifique indique que certains sols sont porteurs d’isolats non
pathogènes de Fusarium spp. ou appartenant à une autre forme spéciale, et agissent comme des suppresseurs de souches
pathogènes 92.

87 Source: Google Image Search
88 Source: Google Image Search
89 Source: Google Image Search
90 Ploetz, 2019
91 Dita et al., 2017
92 Amir & Alabouvette, cited by López and Castaño 2019

134

•

Les composés volatils des champignons endophytes isolés de Musa spp. ont montré un effet inhibiteur très significatif sur Foc ( 93).

•

En ce qui concerne les autres micro-organismes, il a été documenté que B. subtilis inhibe la croissance mycélienne, colonise les tissus
végétaux, réduit la décoloration vasculaire et l’incidence de la maladie 94•

Des études ont montré que :o Serratia marcescens peut agir comme un inducteur de la production d’enzymes impliquées dans la défense des bananiers,
supprimant l’incidence de la maladie.95
o Streptomyces griseus affecte le développement du Foc, en inhibant la formation des spores et la dégradation de la paroi
cellulaire du champignon.96
o Streptomyces violaceusniger G10 inhibe la croissance mycélienne et empêche la formation de conidies•

Les composés volatils des champignons endophytes isolés de Musa spp. ont montré un effet inhibiteur très significatif sur Foc97.

•

En ce qui concerne les autres micro-organismes, il a été documenté que B. subtilis inhibe la croissance mycélienne, colonise les tissus
végétaux, réduit la décoloration vasculaire et l’incidence de la maladie 98

93 Ting et al., cited by López and Castaño 201994 Sun et al., cited by López and Castaño 201995 Ting et al., cited by López and Castaño 2019
96 Zacky & Ting, cited by López and Chestnut 201997 Ting et al., cited by López and Castaño 201998 Sun et al., cited by López and Castaño 2019

135

Références
Arredondo, H ; Rodríguez, L. 2015. Casos de control biológico en México. Vol. 2 biblioteca
básica de agricultura. 38 p. ISBN 978-607-715-258-3.
Bayer CropScience. 2018. Racimo de soluciones. Guía técnica para banano. Ecuador. 40 p.
Castañeda, R. 2016. Control biológico de plagas y enfermedades. Universidad popular dela Chontalpa. Mexique. 216 p. Consultado 24 oct. 2020. Disponible enhttps://images.app.goo.gl/vGDi6RFSFN4jirEb8.
Ceballos, G ; Álvarez, E ; Bolaños, M. 2014. Reduction in populations of Ralstonia
solanacearum race 2 in plantain (Musa AAB, Simmonds) with extracts from Trichoderma spp.
Alexopoulus y Mims) and antagonistic bacteria. Acta agronómica 63, p. 83-90.
Cock, M. 1996. Control biológico de malezas. Manejo de malezas para países en desarrollo.
FAO. Rome, Italia. 394 p. ISBN 92-5-303427-0.
Control Bío. 2020. ¿Quiénes son los enemigos naturales de la cochinilla? Consultado 26 oct.
2020. Disponible sur http://controlbiologico.info/index.php/es/control-biologico-de-plagas-yenfermedades/plagas-agricolas/cochinillas
Coyne, D ; Kidane, S. 2019. Nematode pathogens. Handbook of Diseases of Banana, Abacáand Enset. Edited by David R. Jones. UK. CABI. P. 429-461.
Cubillo, D. 2013. Manejo integrado de plagas: conceptos y aplicaciones. Chemplast
International Corp., San José, Costa Rica. 105 p.
Dita, M ; Echegoyen, P ; Pérez, L. 2017. Plan de contingencia ante un brote de la raza 4 tropicalde Fusarium oxysporum f.sp. cubense en un país de la región de OIRSA. OIRSA. San Salvador,
El Salvador. 211 p.
EcuRed. 2020. Cycloneda sanguinea L. Consultado 27 oct. 2020. Disponible enhttps://www.ecured.cu/Cycloneda_sanguinea_L.
Eden-Green, S. 2019. Moko bacterial wilt and bugtok. Handbook of diseases of banana,abacá and enset. Edited by David R. Jones. UK. CABI. p. 314-323.
Elzein, A ; Kroschel, J. 2004. Progresos en el manejo de malezas parásitas. Manejo de malezaspara países en desarrollo. Estudio FAO, Producción y Protección vegetal. Rome, Italia. 319 p.
ISSN 1014-1227. ISBN 92-5-303427-0120.
FAO. 2004. Manejo de malezas para países en desarrollo. Estudio FAO, Producción yProtección vegetal. Rome, Italia. 319 p. ISSN 1014-1227. ISBN 92-5-303427-0120.
González, M ; Cubillo, D. 2014. Guía de manejo de plagas. Lista verde y amarilla. Escama de
Boisduval en banano. CABI/Chemplast/CATIE. Costa Rica. 1 p.
Guzmán, M. 2012. Control biológico y cultural de la sigatoka negra. Tropical Plant Pathology
37 (suplemento), agosto 2012. 45º Congreso Brasileiro de Fitopatología. Manaus, AM. 5 p.
Guzmán, M; Pérez, L; Carlier, J; Abadie, C; De Lapeyre, L; Carreel, F; Marín, D; Romero, R;
Gauhl, F; Pasberg, C; Jones, D. 2019. Black Leaf Streak. Handbook of diseases of banana,abacá and enset. Edited by David R. Jones. UK. CABI. p. 41-115.
Hernández, E ; Camero, A ; Velázquez, Y ; Ramos, C. 2011. La cochinilla de la platanera.
Agrocabildo. Islas Canarias. 6 p.
INTAGRI. 2020. Beauveria bassiana en el control biológico de patógenos. Consultado el 25
oct. 2020. Disponible sur https://www.intagri.com/articulos/fitosanidad/beauveria-bassianaen-el-control-biologico-de-patogenos.
IVIA. 2020. Aphytis melinus. Gestión integrada de plagas y enfermedades en cítricos. Instituto
Valenciano de Investigaciones Agrícolas. Consultado 23 oct. 2020. Disponible en
http://gipcitricos.ivia.es/ahytis-melinus-debach.html.

136

Labrada, R. 2006. Recomendaciones para el manejo de malezas. FAO. Rome, Italia. 61 p.
Loor, J. 2016. Control cultural, físico y químico de la escama blanca (Diaspis boisduvalii) en
cultivos de banano del cantón Marcelino Maridueña. Tesis Ingeniero Agrónomo. Ecuador.
Universidad de Guayaquil. 56 p.
López, S; Castaño, J. 2019. Manejo integrado del mal de panamá [Fusarium oxysporum
Schlechtend.: Fr. sp. cubense (E.F. SM.) W.C. Snyder & H.N. Hansen]: una revisión. Revista
U.D.C.A. Actualidad y divulgación científica volumen 22 No. 2:e1240 ISSN:2619-2551 en línea.
ISSN:0123-4216 impreso. Colombia. 13 p.
Meléndez, G. 2019. Manejo y prevención de cochinilla (Pseudococcus sp.) en el racimo debanano en la hacienda María José 1, zona de Babahoyo. Tesis Ingeniero Agrónomo.
Ecuador. Universidad Técnica de Babahoyo. 38 p.
Meneses, A. 2003. Utilización de hongos endofíticos provenientes de banano orgánico parael control de biológico del nemátodo barrenador Radopholus similis Cobb, Thorne. Tesis deMaestría. CATIE. Costa Rica. 89 p.
Milán, O. 2010. Los coccinélidos benéficos en Cuba. Historia y actividad entomófaga.
Instituto de Investigaciones de Sanidad Vegetal. Fitosanidad V. 14, No. 2, Junio 2010, p. 127135.
Monzón, A; Herrera, I. Méndez, E. 2009. Guía: Uso y Manejo de Paelomyces lilacinus para elcontrol de nemátodos fitoparásitos. Universidad Nacional Agraria. Nicaragua. 15 p.
Morales, D. 2014. Bioprospección de hongos endofíticos para el control biológico delnemátodo barrenador Radopholus similis (Cobb) Thorne en el cultivo de banano. Tesis deMaestría. Instituto Tecnológico de Costa Rica. Costa Rica. 54 p.
Moreira, C. 2017. Evaluación de tres insecticidas orgánicos en el control de cochinilla(Dysmicoccus texensis) en el cultivo de banano (Musa spp.) variedad Williams en la época
lluviosa en la zona la Maná. Tesis Ingeniero Agrónomo. Ecuador. Universidad Técnica Estatalde Quevedo. 74 p.
Ploetz, R. 2019. Fusarium wilt. Handbook of diseases of banana, abacá and enset. Edited byDavid R. Jones. UK. CABI. p. 207-228.
Ramírez, J; Torres, H. 2016. Control del picudo (Cosmopolites sordidus) en el cultivo deplátano (Musa paradisiaca) usando tres agentes biológicos, Heterorhabditis bacteriophora,
Beauveria bassiana y Metarhizium anisopliae. Tesis Ingeniero Agrónomo. Zamorano.
Honduras. 19 p.
Solano, M. 2019. Parasitoides de la escama de boisduval (Diaspis boisduvalii) y porcentaje
de parasitismo, en plantaciones de banano (Musa AAA, subgrupo Cavendish) de lavertiente de Costa Rica. Tesis Ingeniero Agrónomo. Costa Rica. Universidad de Costa Rica.
88 p.
Terry, P. 1996. Manejo de las malas hierbas en bananos y plátanos. Manejo de malezas parapaíses en desarrollo. Estudio FAO, Producción y Protección vegetal. Rome, Italia. 394 p. ISBN
92-5-303427-0.
Valencia, L; Romero, J; Valdez, J; Carrillo, J; López, V. 2006. Taxonomía y registros deChrysopidae (Insecta: Neuróptera) en el estado de Morelos, México. Acta zoológica
mexicana (n.s.) 22(1):17-61 (2006). 45 p.
Valverde, 2004. Progreso en el manejo de Rottboellia cochinchinensis. Manejo de malezaspara países en desarrollo. Estudio FAO, Producción y Protección vegetal. Rome, Italia. 319 p.
ISSN 1014-1227. ISBN 92-5-303427-0120.

137Vidaurre, D; Rodríguez, A. Uribe, L. 2020. Factores edáficos y nemátodos entomopatógenos
en un agroecosistema neotropical de banano. Revista de Biología Tropical, 68(1), 276-288.
Wikipedia. 2020. Chrysoperla carnea. Consultado 25 oct. 2020. Disponible sur
https://es.wikipedia.org/wiki/Chrysoperla_carnea

RESSOURCES SUR LA PIC
Applications sur la PIC
Application « Pesticides and Alternatives » : https://www.rainforest-alliance.org/articles/appfor-integrated-pest-management
Vous pouvez la télécharger gratuitement sur GooglePlay ou iTunes App Store en anglais, en
portugais ou en espagnol. Une fois téléchargée, vous pouvez l’utiliser hors ligne où vous lesouhaitez. Cette application vous fournira des informations sur les pesticides et leursalternatives par pays
Autres ressources sur l’utilisation sûre des pesticides : manipulation, stockage et transport despesticides
FAO. 2008. Guide des options de gestion des contenants vides de pesticides :http://www.fao.org/fileadmin/templates/agphome/documents/Pests_Pesticides/Code/Containers08.pdf
Lignes directrices de CropLife pour la gestion des contenants :https://croplife.org/crop-protection/stewardship/container-management/

MODELE DU TYPE MINIMUM D’INFORMATIONS A
ENREGISTRER POUR LA STRATEGIE DE PIC
Le suivi et l’enregistrement des données sont des éléments très importants de la stratégie de
PIC pour savoir si elle est efficace ou si elle doit être mise à jour ou modifiée.
Cela vous aidera également lors de la mise à jour annuelle de la stratégie. Veillez au moins à
enregistrer et à conserver les informations suivantes sur chaque ravageur :
1.
2.
3.
4.
5.
-

Nom du ravageur (nom local, nom scientifique)
Heure et lieu de l’apparition :Principaux ennemis naturels :Seuil et méthode d’échantillonnage :Gestion :Mesures préventives
Mesures de lutte
o Non chimiqueo Chimique138

EXEMPLES D’ENNEMIS NATURELS
Illustration de l’exemple

Organisme bénéfique

Ravageur combattu (proie ou hôte)

Prédateurs

Coccinelles(Coccinellidae)
larve et adulte(plusieurs espèces)les pucerons sont les proies préférées,mais ils mangent également descochenilles, des tétranyques et d’autres
parasites à corps mou ainsi que leursœufsDelphibug(Delphastus catalinae)

Se nourrit d’aleurodes à
tous les stades

Adulte (ci-dessus) et larves(ci-dessous) et adulte de
Cryptobug(Cryptolaemus montouzieri).
La larve ressemble aux
cochenilles farineuses et elles
peuvent facilement se
confondre

Se nourrit de cochenilles et depucerons

139

Chenille du papillon Apefly(Spalgis epeus), qui ressemble
à sa proie, la cochenillefarineuse

Les larves et les adultes deColéoptère prédateur(Rhyzobius lophantae)

Cochenilles farineuses

Se nourrit de cochenilles à bouclier

Larves et adultes deColéoptère Vedalia(Rodolia cardinalis)

Se nourrit de la cochenille australienne,
de la cochenille farineuse de l’oranger

Larves de chrysopes vertes(Chrysoperla ssp)

Pucerons, acariens et autres insectes

Nymphes et adultes deAcarien prédateur (famille :Phytoseiidae)

Se nourrit de tétranyques, d’aleurodes,de larves de thrips, de larves demouches et de nymphes de psylles

140Larves de cécidomyies(Feltiella ssp)
L’adulte peut être facilement
confondu avec un petit
moustique

Adulte de la punaise
prédatrice(Macrolophus ssp)

Se nourrit de tétranyques, de pucerons,

Adulte : sa proie préférée est
l’aleurode, mais se nourrit également
de pucerons, d’œufs de papillons denuit et de petites chenilles (y compris leslarves de mineuses), de nymphes de
psylles,
La nymphe se nourrit de tétranyques

Adulte de la punaise
prédatrice (Orius ssp)

Nymphes et adultes de lamante religieuse

Adulte (en haut) et larve (enbas) de syrphes (plusieurs
genres)Se nourrit des nymphes et des adultes
de thrips, des pucerons

Se nourrit de sauterelles, de criquets,
d’abeilles, de guêpes et de mouches

Se nourrit de pucerons(les adultes se nourrissent de pollen etde nectar)

141

142

Parasitoïdes

Guêpe parasite(plusieurs genres)

Parasite les larves d’aleurodes, lespucerons, les nymphes de cochenilles
farineuses, les œufs et les larves depapillons et de papillons de nuit, lesœufs de punaises, les nymphes de
psyllesGuêpe trichogramme adulte(plusieurs Trichogramma sp.)

Plus de 200 espèces de parasites, dont
des vers gris, des légionnaires, des versde fruits et de nombreux œufs depapillons de nuit et de papillons

Une petite guêpe Trichogramma
sur un œuf de ver des fruitsGuêpes braconides adultes(plusieurs espèces)Guêpe Diglyphus isaea
adulteParasite une large gamme deravageurs (lépidoptères, coléoptères,etc.)

Larves de la mineuse des feuilles

143

Pathogènes

Nématode
entomopathogène(Steinerma ssp)

Tue les pupes de thrips, les larves demouches, les chenilles vivant dans le sol
et un grand nombre d’autres insectes

Nématode
entomopathogène(Heterorhabditis
bacteriophora)

Infecte les larves de coléoptères, deforeurs et de charançons vivant dans lesolGalleria mellonella (ver de cire) en
bonne santé (à gauche), infectépar Steinerma carpocapsae (aumilieu), et infecté par Steinernema
glaseri (à droite)

Ver blanc sain (à gauche) et ver
blanc infecté par Heterorhabditis
bacteriophora (à droite)

Champignon
entomopathogène
Metarhizium anisopliae

Champignon
entomopathogène
Lecanicillium muscarium

Infecte et tue les hannetons, les vers
blancs, les locustes, les termites, lescicadelles, les pucerons, les thrips, lesaleurodes, les charançons et les tiques.
Les champignons entomopathogènes
doivent être utilisés à une températurecomprise entre 12 et 32 degrés Celsius
et ciblés sur le ravageur.

Infecte les larves d’aleurodes, parfois
aussi les pupes et les adultes.
Les champignons entomopathogènes
doivent être utilisés à une températurecomprise entre 12 et 32 degrés Celsius
et ciblés sur le ravageur.

Aleurodes tués par L. muscarium

Champignons
entomopathogènes
Beauveria bassiana et Isaria
fumosorosea

Infectent les larves d’aleurodes, lesthrips.
Les champignons entomopathogènes
doivent être utilisés à une températurecomprise entre 12 et 32 degrés Celsius
et ciblés sur le ravageur.

144

Bactéries entomopathogènes
Bacillus thuringiensis

Larves de plusieurs papillons de nuit etde papillons de jour

Chenille tuée par Bacillus
thuringiensis

Bactéries entomopathogènes
Racine infectée par desnématodes

Bacillus subtilis et B.
licheniformis

Infecte et tue les nématodes (plusieurs
espèces)Racine traitée avec B. subtilis

Prédateurs — en voici d’autres. Les oiseaux, les hiboux et les chauves-souris sont également
des prédateurs importants. Les araignées comptent parmi les meilleurs prédateurs (en raisonde leur nombre et de leur espèce).

145

Autres ennemis naturels
Punaises assassines

Demoiselles

Oiseaux

Hiboux

Chauves-souris

146

Araignées

147