Journal of Environmental Biotechnology（環境バイオテクノロジー学会誌）
Vol. 7, No. 1, 33–38, 2007

原 著 論 文（通常論文）

コンポストメタゲノムライブラリーの作製とセルラーゼ活性を有するクローンの検索
Construction of Compost-Metagenome Library
and Screening of Functional Gene Encoding Cellulase矢部

修平 *，関山

佳治，進藤

斉，小泉

武夫

SHUHEI YABE, YOSHIHARU SEKIYAMA, HITOSHI SHINDO and TAKEO KOIZUMI
東京農業大学応用生物科学部醸造科学科 〒 156–8502 世田谷区桜丘 1–1–1* TEL: 03–5477–2379 FAX: 03–5477–2379* E-mail: 60040003@nodai.ac.jp
Department of Fermentation, Tokyo University of Agriculture, 1-1-1, Sakuragaoka, Setagaya-ku Tokyo 156-8502, Japan（原稿受付

2006 年 12 月 14 日／原稿受理

2007 年 1 月 8 日）

Using DNA obtained from the metagenome of compost, we constructed a gene library. The percentage of plasmid withinsert was approximately 96%. Approximately 5,000 clones in the library were screened for carboxymethylcellulase (CMCase)
activity on the plate. One clone showed CMCase activity. Gene walking and DNA sequence analysis found one open reading
frame (ORF) of 1,125 bp in the cloned fragment and ORF was designated ORF-1. Putative product of ORF-1 was not similar with any cellulase genes, but showed 46% similarity to DNA modification methylase from Simbiobacterium thermophilum. The ORF-1 product possesses glycosyl hydrolase family 16 sequence motif which is thought to be involved in endo1,3(4)-β-glucanase activity. This motif was not detected in the proteins showing similarity to the ORF-1 product. These
results suggest that ORF-1 is a novel CMCase gene.
Key words: Compost, metagenome, CMCase, uncultured bacterium, Congo Red assay
キーワード：コンポスト，メタゲノム，CMCase，未培養細菌，コンゴーレッドアッセイ

1.

緒

言

環境細菌中で平板培養などの方法を用いて容易に培養できるものは約 1％未満とされており 1），既知の酵素遺伝子の他に自然界には未知酵素遺伝子が多々存在することが予想される。近年，環境中の遺伝子を非培養的に直接抽出してその DNA ライブラリーを作製するメタゲノ
ムライブラリー法により新規機能遺伝子が取得されている。特に土壌を遺伝子源とした報告が多く 10），新規のプロテアーゼやアミラーゼなどが獲得されている 4,9）。
土壌中では糞尿，枯草や死骸などの有機物が長年かけて分解されるが，コンポスターでは有機性廃棄物が短期間で分解されるため，有機物分解に必要な酵素遺伝子が豊富に含まれていると予想される。しかし，フミン酸などの酵素反応阻害物質が土壌よりも多量に含まれている
ためか 2） メタゲノムライブラリーの作製はほとんど報告されていない。そこで本研究では，まず第一にコンポ
ストのメタゲノムライブラリー作製を目的とした。
一方，著者ら 12）は，これまでスクープ式コンポスター（ハザカプラント社製）中で，発酵初期に完熟コンポス
トを一部回分的に添加するとその発酵熱で品温が 80°C以上に達し，その結果原料由来の大腸菌群などが死滅，構成細菌群が安定し，衛生的なコンポストを半連続かつ継続的に約 25 日間隔で生産可能にしていることを報告した。
また同コンポスターは，難分解性糖類であるセルロー
ス類も熱によって膨張軟化することで発酵初期から急速に分解される特徴を有することを明らかにするとともに，品温の変化や水分含有量の低下，pH の上昇，有機物含量の低下，また有機物組成の変化に伴って優占菌が遷移し，発酵初期，中期，後期とも Firmicutes 門の分子系統的に異なる nonculturable bacteria が優占することを見出した（投稿中）。
これらのことから半連続操作により様々な有機物処理に馴養されたこの完熟コンポストは特に安全であり，かつ nonculturable bacteria 由来の難分解性糖類加水分解遺伝子資源として有効であると思われる。
そこで本研究ではコンポストメタゲノムライブラリーの作製に次いでセルラーゼ活性を有するクローンを検索し，新規セルラーゼ遺伝子の獲得を試み，作製ライブラ
リーの妥当性の評価を行った。
2.
2.1.

材料および方法DNA 抽出と限定分解条件の検討

完熟コンポスト 0.5 g の DNA を ISOIL（ニッポンジー

34

矢部

ン社製）を用い抽出し，0.25％ Agarose H（ニッポンジー
ン社製）を用いたアガロースゲル電気泳動にて高分子
DNA を取得した。次に抽出した高分子 DNA 1 µg に対して Sau3AI を 1/8-2 U まで段階的に変化させて限定分
解した 5 µl 反応液のパイロット実験で，1 つの酵素をコードするのに必要十分な長さである 2 〜 10 kbp 付近にバンドが強く検出される条件を検討した。
2.2.

コンポストメタゲノムライブラリーの作製

パイロット実験によって決定した限定分解最適条件で25 倍スケールにて限定分解を行い，電気泳動後，ゲルから GENEPURE（ニッポンジーン社製）を用いて 2 〜
10 kbp の DNA 断片を抽出・精製した。その精製産物をλ フ ァ ー ジ 系 ベ ク タ ー で あ る ZAP Express（BamHI）
Vector（ストラタジーン社製）にライゲーションさせ，
ZAP Express Gigapack Gold Cloning Kit（ストラタジー
ン社製）
を用い in vitro Packaging を行った。
そのタイター
チェックをブルー・ホワイトセレクションと同時に行った。このライブラリーの増幅を行い，ファージライブラ
リー液から ZAP Express Vector の pBK-CMV Phagemid
Vector を mass in vivo excision により切り出した。なお，
ライゲーションから以上までの操作はすべてキット付属のプロトコールに従った。切り出した phagemid 溶液
1 µl と 200 µl の Escherichia coli XLOLR 株 培 養 液（10 mM MgSO4 に OD600=1.0 に懸濁）に混合し，37°C
にて 15 min アタッチメントさせた後，40 µl の 5×NZY
broth を加え，37°C で 45 min 培養した。次に 0.5％カル
ボキシメチルセルロースナトリウム塩（以下 CMC）およびカナマイシンを含む Luria-Bertan 寒天培地に発現誘導物質である 0.5 M イソプロピル-β-D-チオガラクトシド（IPTG）溶液 15 µl を塗抹し，培養液 100 µl を塗布した。
これを 37°C で 1 晩培養し，インサート DNA の平均サイズを求めるため， 無作為に選択した 20 クローンのプ
ラスミドを QIA prep Spin Miniprep Kit を用いて抽出し，それを BamHI にて切断後，0.8％アガロースゲル電気泳動にて挿入断片のサイズを測定した。
2.3.

CMCase 活性を有するクローンの検索

1,4-(1,3;1,4)-β-D-グ ル カ ン 4-グ ル カ ノ ヒ ド ロ ラ ー ゼ（E.C. No. 3.2.1.4.）活性を有するクローンは，カルボキ
シメチルセルラーゼ（CMCase）活性を指標にスクリーニングした。スクリーニング手法は以下のとおりである。
0.7％（w/v）アガロース溶液を形質転換株のコロニーが形成した寒天プレートに約 10 ml 重層した。15 min 室温で静置後，0.1％コンゴーレッド溶液を用いて染色，1 M
NaCl 溶液で 30 min 洗浄した。この操作を 2 回繰り返した。CMCase 活性によりコロニー周辺に薄黄色のクリア
ゾーンを形成したコロニーをスクリーニングした。
2.4.

インサート DNA 配列の解読及び解析

クリアゾーン形成クローンのプラスミドを抽出し，ベクター固有の pBK-CMV M13 プライマーと pBK-CMV
BK リバースプライマーを用い BigDye Terminator v3.1
Cycle Sequencing Kit（Applied Biosystems 社製）でシー
ケ ン シ ン グ 反 応 を 行 っ た。 そ し て，ABI PRIZM310
AUTO SEQUENCE ANALYZER にて挿入断片の DNA

他

塩基配列を解読した。
2.5.

ジーンウォーキングによる 3' 末端の解読

完 全 長 の CMCase 活 性 を 有 し て い る と 推 察 さ れ る
ORF（ORF-1）を取得するため，TaKaRa LA PCR in vitro
Cloning Kit（タカラバイオ社製）を用いて 3' 領域のジー
ンウォーキングを行った。即ち，完熟コンポストから抽出した高分子 DNA 5 µg を BamHI（50 U）で処理後，キット付属の BamHI サイトが付加されたオリゴヌクレオチド（BamHI カセット）とライゲーションさせ，そのラ
イゲーション溶液を鋳型にカセット配列に特異的なキッ
ト付属のプライマー C1 と ORF-1 配列中の 173–196 bp（5'-ATGGTCGAGGTGTTCCGGGAAGTG-3'） の プ ラ イ
マー S1 を用いて一次 PCR を行った。その一次 PCR 溶
液を鋳型にカセット配列中でプライマー C1 より下流に位置するキット付属のプライマー C2 と ORF-1 配列中の 390–419 bp（5'-TCGCGTTACAAGCCGACGGCTGGTATCTGC-3'）のプライマー S2 を用いて二次 PCR を行った。更に，プライマー S2 と ORF-1 配列中の 997–1021 bp（5'-AGGAATCGTCCTCGACCCGTTTTTT-3'）のプライ
マー S3 を用いて二次 PCR 溶液を鋳型に三次 PCR を行い，それぞれの PCR 産物をアガロースゲル電気泳動にて確認した。すべての PCR 条件は最初の変性 94°C，
2 min 保持した後，変性 95°C：30 sec，アニーリング 60°C：
30 sec，エクステンション 72°C：2.5 min の処理を 30 サ
イ ク ル 行 い， 最 後 に 72°C，5 min 反 応 さ せ た。 三 次
PCR 産物をアガロースゲル電気泳動後，ゲルから特異的バンドを QIAEXII Gel Extraction Kit（キアゲン社製）に て 抽 出・ 精 製 し， そ の DNA 溶 液 を pGEM-T Easy
Vector（ プ ロ メ ガ 社 製 ） を ベ ク タ ー Escherichia coli
DH5α を宿主として TA クローニングした。そしてクローニング断片の配列を解読した。
2.6.

ORF-1 の高発現

解 読 し た 完 全 長 ORF を 高 発 現 ベ ク タ ー で あ る
pGEX4T-1 へ導入した。まず，コンポストから抽出した
高分子 DNA を鋳型にクローニングのための BamHI サ
イトを付加したプライマーにて完全長 ORF-1 を PCR により増幅させた。プライマー配列は 5'-CGTGGATCCGTGAAAAACGTAATACTCCAGGGTGA-3' フォワード
プライマー）と 5'-CGTGGATCCTCATTTTCCCGCCTCCAATCTCTTTT-3'（ リ バ ー ス プ ラ イ マ ー） で あ り，BamHI サイトをアンダーラインで示した。アガロース
ゲル電気泳動で分画・抽出精製した 1.2 kb の PCR 増幅
産物と pGEX4T-1 ベクターを BamHI で処理し，ライゲーションした。そのライゲーション溶液により XJb
Autolysis E. coli 株（ザイモリサーチ社製）を形質転換し，100 µg/ml アンピシリンを含む LB 寒天培地に塗抹した。
ポジティブクローンのプラスミドを抽出し，インサートDNA を 解 読 し て 読 み 枠 が 正 常 で あ る こ と と 配 列 がORF-1 と一致していることを確認した。ここで得られた組み換えプラスミドを pGEX orf-1 と命名した。XJb
Autolysis E. coli（pGEX orf-1）を 100 µg/ml アンピシリ
ンと 1.5 µM アラビノースを含む LB 液体培地 2 ml に接
種 し，37°C，150 rpm で 1 晩 前 培 養 後， 同 培 地 200 mlに培養液全量を添加し，同様に培養後，OD600 が 0.6 にコンポストメタゲノム解析

35

なった時点で終濃度 0.5 mM となるように IPTG を添加し，引き続き 3 時間培養した。培養液を 7,000×g，4°C
で 10 min 遠心分離して集菌後，50 mM トリス塩酸緩衝液（pH 7.2）にて 2 回洗浄して，同緩衝液 4 ml に懸濁した。その菌体懸濁液を –80°C と 37°C にて凍結，融解を 3 回繰り返し，18,000×g，4°C で 10 min 遠心分離して，その上清（菌体抽出液）を得た。なお，宿主の XJb Autolysis E. coli 株はアラビノースオペロンのプロモーター
直下の araB が λ-ライソザイム遺伝子に置換されている
ため，アラビノース存在下でライソザイムが誘導され，凍結融解によって自己融解が起こる。
2.7.

発現タンパク質の精製及び SDS-PAGE

得 ら れ た 菌 体 抽 出 液 を MicroSpin GST Purification
Module（アマシャムバイオサイエンス社製）によりグ
ルタチオン-S-トランスフェラーゼ (GST)-ORF-1 融合タ
ンパクを精製した。実験操作は付属のプロトコールに従った。次に得られた精製 GST-ORF-1 融合タンパク質と菌体抽出液を 12.5％（w/v）ポリアクリルアミドゲルを用いた SDS-PAGE を Laemmli 7） の方法に従って行った。ゲルはクーマシーブリリアントブルー R-250 で染色した。また，コントロールとして，pGEX4T-1 ベクター
のみを XJb Autolysis E. coli 株に形質転換したものについても同様の操作を行った。
2.8.

CMCase 活性の測定

CMCase 活性は菌体抽出液および精製 GST-ORF-1 溶
液 50 µl をそれぞれ 0.5％ CMC を含む 50 mM トリス塩
酸緩衝液（pH 7.2）200 µl に添加し，37°C で 30 min 反応させ生成された還元糖をジニトロサリチル酸法 8） にて測定することにより算出した。なお 1 µmol の還元糖を生成する酵素量を 1 unit とした。また，タンパク質含量は Protein Assay Rapid Kit（和光社製）を用いて測定した。コントロールについても同様の操作を行った。
2.9.

ORF-1 遺伝子産物の相同性検索及びマルチアライ
メント解析

ORF-1 遺 伝 子 産 物 の ア ミ ノ 酸 配 列 の 相 同 性 検 索 をBLASTP（http://www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST/）にて行った。また相同タンパク質とのマルチアライメント解析を
CLUSTALW analyzing system（http://www.ddbj.nig.ac.jp/
search/clustalw-j.html）で行った。またモチーフ検索を
MOTIF search（http://motif.genome.jp/）で行った。
3.
3.1.

結果と考察

DNA の最適限定分解条件

限定分解のパイロット実験の結果，Fig. 1 に示したよ
うに Sau3AI の濃度依存的に限定分解度合いが増加した。このことから，本キットを用いることによって夾雑物が多く含まれるコンポスト中からでも抽出後に別の精製過程を経ずに制限酵素反応が可能であることが示唆された。本キットはこれまで困難とされてきたフミン酸を多量に含む火山灰土壌からの DNA 抽出が可能なことを特徴としており，付属の抽出液は組成及び pH が，効率よくフミン酸を除去し DNA を抽出できるように調整さFig. 1. Optimization of Sau3AI-partial digestion of compostDNA.
Lane 1, λHindIII-digested maker Compost-DNA was digested
with Sau3AI at 2 unit (lane 2), 1 unit (lane 3), 1/2 unit (lane4), 1/4 unit (lane 5) and 1/8 unit (lane 6) at 37°C for 1 h.

れている。よってコンポストからも酵素反応を阻害しない高分子 DNA が抽出可能であったものと推察した。なお，DNA 抽出時にビースによる撹拌工程が有る他のキットを使用した場合，DNA が物理的に切断されてしまい，
制 限 酵 素 反 応 が 進 ま な か っ た（ 未 発 表 ）。Sau3AI を
1 unit で 37°C，1 h 反応させることによって 2–10 kbp 付
近の限定分解 DNA が多くなることから，これを最適条
件とした。
3.2.

コンポストメタゲノムライブラリーの作製作製したライブラリーのタイターは 6.8×106 pfu/ml，
インサート効率は 96％であり，Gigapack Gold packaging extract（ストラタジーン社製）を用いた際の予想組
換えプラーク数である 1.0×106–1.5×107 の範囲内に達した。よってコンポスト DNA からの良質なメタゲノムラ
イブラリーの作製に成功したと考えられた。また，挿入断片の平均長は 7.0 kbp であった。メタゲノムからベク
ター由来プロモーターを用いて発現を期待する場合，イ
ンサートサイズは 5–10 kbp が効率的だと考えられている 7） ため，このライブラリーは機能遺伝子を探索するのに適していると考えられた。
3.3.

CMCase 活性を有するクローンの検索

約 5,000 クローンから 1 クローンを得た。そのコロニー写真を Fig. 2 に示した。λZAP システムを用いて作成した湖由来のメタゲノムライブラリーに対してコンゴーレッドアッセイでスクリーニングした場合，36,000
クローン中 1 クローンがポジティブクローンであったと報告されている 6）。この報告と比較すると，今回の研究では比較的高確率で CMCase 活性を有するクローンが取得できたと考えられる。この原因は本コンポストの原料が牛糞，剪定屑や食品残渣など主要糖類がセルロースであるためと考えられた。

36

矢部

他

Fig. 2. Screening for cellulase activity using Congo red assay on
agar plate.
(a) positive recombinant clone, (b)control strain (E. coliXLOLR [pBK-CMV]).

3.4.

インサート DNA 配列の解読と解析得られた DNA 塩基配列について Open Reading Frame
Finder（http://www.ncbi.nlm.nih.gov/gorf/gorf.html） に より ORF を 検 索 し た と こ ろ，1,632 bp の 挿 入 断 片 中 に
1,125 bp の 3' 末端領域を欠いた読み取り枠（ORF）が見いだされた（Fig. 3）。Shine-Dalgarno 配列の存在と相同タンパク質との位置関係から推察し，インサート塩基
配列の開始から 508 番目の GTG が開始コドンであると推定した。この 375 アミノ酸残基の産物をコードする
ORF を ORF-1 と 命 名 し た。ORF-1 は pBK-CMV の
lacZ' 配列由来の終止コドンとフレームが一致している。
おそらくその融合蛋白質が CMCase 活性を発揮しているものと推察された。
3.5.

ジーンウォーキングによる ORF-1 の 3' 末端の解読

ジーンウォーキングの PCR 産物の電気泳動結果をFig. 4 に示した。これより一次，二次 PCR は明確なメ
インバンドが認められないが，三次 PCR 産物には約200 bp にメインバンドが認められた。この遺伝子断片を解読した結果，ORF-1 の配列と一致し，更に 32 bp 下流の解読に成功した。終止コドンは ORF-1 の最後のコドンである Lys の次に認められた（Fig. 3）。これにより，完全な ORF-1 を得ることに成功した。
3.6.

ORF-1 の高発現・精製及び CMCase 活性

XJb Autolysis E. coli（pGEX orf-1）の菌体抽出液及びMicroSpin GST Purification Module 似て精製後の GSTORF-1 融合タンパク質の SDS-PAGE を行ったところ，Fig. 5 に示したように GST（26 kDa）と ORF-1（41.9 kDa）の融合タンパク質である 67.9 kDa 付近に単一バンドが確認できたため，正常に GST-ORF-1 融合タンパク質が発現し，精製されたことが確認された。
菌体抽出液及び精製 GST-ORF-1 融合タンパク質のCMCase 活性を測定した結果，Table 1 に示したように
コントロールにはほとんど認められない CMCase 活性が，精製後の GST-ORF-1 融合タンパク質に認められた。
よって ORF-1 産物が CMCase 活性を有することが証明

Fig. 3. Nucleotide sequence of the inserted fragment in the recombinant plasmid from the CMCase-positive clone. Number ofthe either side indicates nucleotide position. Single-letter
abbreviations for amino acids are listed beneath the first basein each codon. Potential Shine-Dalgarno sequences are underlined. Gene walking sequences are doubly underlined. Start
codon and stop codon are marked with open boxes.
(Accession No. AB286874)

された。
ORF-1 遺伝子産物のアミノ酸配列の相同性検索の結果，セルラーゼ系の酵素の配列とは相同性を示さなかった。しかし面白いことに DNA メチラーゼと相同性があった（Table 2）。Symbiobacterium thermophilum IAM
14863 由 来 の putative DNA modification methylase M.
SthI と最も高い相同性（46％）を示した。S. thermophilum は堆肥から分離された好熱菌 Geobacillus toebii の共生細菌であり 8），単独での分離は困難である。相同性がそれほど高くないため，相同性から由来菌の特定はできないが，ORF-1 の産物が未知タンパク質であること

37

コンポストメタゲノム解析
Table 1. CMCase activities of GST-ORF-1 fusion protein
produced in pGEX4T-1 E.coli expression system.
SampleProtein(mg/ml)

CMCase specificactivity (U/mg)

pGEX4T-1 control(induced, no insert)

1.179

0.004

Crude soluble protein from
pGEX4T-1/GST-ORF-1

2.354

0.057

Purified GST-ORF-1 fusion
protein

0.346

0.247

Table 2. Homology of the putative ORF among with otherhomological proteins.
Relative genes

OriginSymbiobacterium
Putative DNA modification thermophilum
methylase M. SthI
IAM14863

Identity
171/370 (46%)

Putative DNA modification Desulfotomaculum 158/371 (42%)
methylase M. SthI
reducens MI-1
Fig. 4. PCR products from three nested PCR for obtaining the 3'
end of ORF-1.
Lane 1, One step ladder 100 marker [Nippon gene]; lane 2,
1st PCR products amplified from compost direct extraction
DNA/EcoRI cassette library with C1 and S1 primer; lane 3,
2nd nested PCR products amplified from 1st PCR productswith C2 and S2 primer; lane 4, 3rd nested PCR products
amplified from 2nd nested PCR product with C2 and S3primer.

Fig. 5. Overexpression in XJb Autolysis E. coli (pGEXorf-1) andpurification of GST-ORF-1 fusion protein.
Lane M, Precision Plus Protein Standard (Bio-Rad); lane E,
Crude soluble protein from XJb Autolysis E. coli (pGEXorf-1);
lane P, Purified GST-ORF-1 fusion protein; lane C, Crude
soluble protein from XJb Autolysis E. coli (pGEX 4T-1)(control).

が示唆された。
相同性が見いだされた S. thermophilum IAM 1486 M.
SthI, Desulfotomaculum reducens MI-1 M. SthI および
Citrobacter freundii シトシン-4-メチルトランスフェラー

Putative DNA (Cytosine4)-Methyltransferase

Citrobacter
freundii

156/369 (42%)

ゼとマルチアライメント解析の結果，Fig. 6 に示したよ
うに，ORF-1 産物のアミノ酸 258–329 番目までの配列は，相同な DNA メチラーゼタンパク質では完全に欠失していた。DNA メチラーゼで欠失が見られた ORF-1 産物の領域についてモチーフ検索した結果，この配列中に糖質
加水分解酵素に特有なモチーフ，ファミリー 37 と 16が見いだされた。このファミリー 37 はトレハロース特有のモチーフであり，ファミリー 16 はエンド-1,3(4)-βグルカナーゼやリケニナーゼ（licheninase）などのモチー
フ で あ る。 し た が っ て， フ ァ ミ リ ー 16 モ チ ー フ がORF-1 産物の CMCase 活性に寄与しているのかもしれない。類似した例として，Bacillus cereus 由来リン脂質分解酵素に DNAaseI の触媒活性に関与する重要なアミノ酸残基だけが分子進化的に保存されていたため DNAaseI 活性も示したという報告もある 11）。一般的に，長い年月の中で，ある酵素遺伝子に点突然変異が蓄積したり，他の遺伝子との組み換えが起こるなどして，その遺伝子産物は異なった酵素特性や他の活性を持つようになると考えられている。コンポストは様々な微生物が存在し，その世代交代も激しいため，分子進化速度もまた速いと考えられる。本研究で得られた ORF-1 の産物は，
もしかすると，本来 DNA メチラーゼであったものが，難分解性糖質が多いコンポストの環境の中で急速に分子進化し，CMCase 活性を獲得していったのかもしれない。
この考えを検証するためにも，ORF-1 産物中のファミリー 16 モチーフが CMCase 活性に必須であることや，
また，DNA メチラーゼにこのモチーフを付加することにより CMCase 活性も付与できるかについて実験的に検討する必要があろう。
以上より，夾雑物の多く含まれるコンポストから良質なメタゲノムライブラリーの作製を可能とした。また，
その中からプレート上で CMCase 活性を有し，他のセルラーゼとの相同性が無い未知遺伝子の獲得に成功し，

38

矢部

他

Fig. 6. Comparison of amino acid sequences between the ORF-1 product and putative DNA methylases from Pseudomonas syringae (STM),
Citrobacter freundii (CFM) and Desulfotomaculum reducens (DRM).
Number of the light side indicates amino acid position. Identical amino acid residues are indicated by asterisks. Underline (A) is glycosylhydrolase family 37 and under line (B) is glycosyl hydrolase family 16.

作製ライブラリーは高温コンポストに特徴的な未知機能遺伝子を獲得できることを明らかにした。
4.

要

約

フミン酸などの夾雑物が多量に含まれるコンポストを
遺伝子資源として，メタゲノムライブラリー作製を試みた結果，組換えプラーク数が理論値に達したため良質なライブラリーの作製に成功した。よって本方法を用いて他のコンポストからでもライブラリー作製が可能である
ことが示唆された。
また，Mass in vivo Excision 後の E.coli XLOLR 株形質転換ライブラリーより，5,000 クローンをスクリーニン
グ し た 結 果 プ レ ー ト 上 で CMCase 活 性 を 有 す る コ ロ
ニーを 1 クローン獲得した。そのインサート配列を解読した結果，375 aa の ORF-1 が存在した。これは不完全長であったためジーンウォーキング法にて完全長
ORF-1 を取得した。最も高い相同性を示すタンパク質は Symbiobacterium thermophilum IAM14863 由来 putative DNA modification methylase M. SthI であり，相同性は 46％の未知酵素タンパク質であることが示唆された。
この ORF-1 のみを高発現ベクター pGEX 4T-1 に連結
後，XJb Autolusis E. coli 株に形質転換され IPTG による誘導によって ORF-1-GST 融合タンパク質を発現させ，精製した。この精製 ORF-1-GST 融合タンパク質にCMCase 活性が認められたため，ORF-1 が CMCase 活性を示すことを証明した。この 1 次構造中にはセルラーゼに関与する糖質加水分解酵素ファミリー 16 が存在し，
相同タンパク質中にはこのモチーフが完全に欠失していたため，この存在によって CMCase 活性を有した可能性が考えられた。以上より作製ライブラリーは高温コン
ポストに特徴的な未知機能遺伝子を獲得できることを明らかにした。

文

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