Journal of Environmental Biotechnology（環境バイオテクノロジー学会誌）
Vol. 10, No. 2, 97–103, 2010

総

説（一般）

Two-pass TSA-FISH 法を用いた微生物機能遺伝子の視覚的検出技術
Development of Two-pass TSA-FISH for Detection of Functional Genes
in Environmental Microorganisms
長谷川拓也 1，川上周司 2，井町

寛之 3，大橋晶良 4，原田秀樹 1，久保田健吾 1*

TAKUYA HASEGAWA, SHUJI KAWAKAMI, HIROYUKI IMACHI, AKIYOSHI OHASHI, HIDEKI HARADA and KENGO KUBOTA
1東北大学大学院工学研究科土木工学専攻 〒 980–8579 宮城県仙台市青葉区荒巻字青葉 6–6–06
2
長岡技術科学大学工学部環境・建設系 〒 940–2188 新潟県長岡市上富岡町 1603–1
3海洋研究開発機構海洋・極限環境生物圏領域 〒 237–0061 神奈川県横須賀市夏島町 2–15
4
広島大学大学院工学研究院社会環境空間部門 〒 739–8527 広島県東広島市鏡山 1–4–1* TEL: 022–795–7466 FAX: 022–795–7465* E-mail: kengok@epl1.civil.tohoku.ac.jp
1
Dept. of Civil and Environmental Engineering, Tohoku University,
6–6–06 Aoba, Aoba-ku, Sendai, Miyagi 980–8579, Japan
Dept. of Environmental Systems Engineering, Nagaoka University of Technology,
1603–1 Kamitomiokamachi, Nagaoka, Niigata 940–2188, Japan
3
Institute of Biogeosciences, Japan Agency for Marine-Earth Science and Technology,
2–15 Natsushima, Yokosuka, Kanagawa 237–0061, Japan
4
Dept. of Civil and Environmental Engineering, Hiroshima University,
1–4–1 Kagamiyama, Higashi-Hiroshima, Hiroshima 739–8527, Japan
2

キーワード：機能遺伝子，two-pass TSA-FISH 法，ポリヌクレオチドプローブ
Key words: functional genes, two-pass TSA-FISH, polynucleotide probes
（原稿受付

1.

2010 年 10 月 14 日／原稿受理

はじめに

標的微生物を分離・培養せずに原位置（in situ）で検出可能な fluorescence in situ hybridization（FISH）法は，
標的微生物の形態学的特徴の把握，細胞レベルでの定量解析およびニッチェにおける空間分布の把握が可能な技術である1,2)。加えて，FISH 法は放射性あるいは安定同位体ラベルされた基質を用いて微生物の機能推定を行う
microautoradiography (MAR)-FISH 法19,25) や secondary
ion mass spectrometry (SIMS)-FISH 法20,24) としても利用されている。さらに，近年では培養困難な微生物のゲノム配列を決定するために，FISH 法で標的細胞を光らせ，
セルソーターで回収しゲノム配列の決定を行うシングル
セルゲノム解析にも用いられている18)。すなわち，FISH
法は今日の微生物生態解析において必須の技術であると言える。
FISH 法は，蛍光標識プローブを標的微生物の核酸（主に rRNA）に特異的に結合させ，落射蛍光顕微鏡や共焦点レーザー顕微鏡で観察することで，標的微生物のみを特異的に検出する技術である。従って，蛍光標識プロー
ブを用いる場合，FISH 法で得られる蛍光強度は標的分子に交雑するプローブの数と相関関係にあるため7)，細2010 年 11 月 11 日）

胞内に数多く存在する分子である rRNA は標的として適している。しかしながら，海洋や土壌など貧栄養環境
下で代謝活性の低い微生物については，細胞内に FISH法で検出できる十分な rRNA が発現されていない場合が多く，検出が困難であるという問題を抱えている5,28)。
また rRNA 以外の核酸で，極めて存在量の少ない mRNA
（100~102 copies/cell） や 機 能 遺 伝 子（1~ 数 copies/cell）の検出は，微生物機能の推定につながるため，それらを検出することの重要性は FISH 法の登場直後から認識されていたものの，FISH 法の感度不足のために困難であった2,26,37)。従って FISH 法の高感度化は，FISH 法を用いて微生物の系統（rRNA）から機能（mRNA，機能遺伝子）まで解析するための重要な課題であった。
2.

高感度 FISH 法の現状

今日までに低 rRNA 含量の細胞，mRNA や機能遺伝子を検出可能な高感度 FISH 法が幾つか開発されている。これまでに報告されている高感度 FISH 法は，大きく分けて標的の数を増やす方法と増やさない方法に大別される（表 1）。しかしながらこれらの高感度 FISH 法には，実験系の構築や実験操作により高度なスキルが要プローブ合成に標的遺伝子断片が必要である。 39)，40)
高い

低い

△

菌体全体

菌体の一部分○Two-pass TSA-FISH 法

オリゴヌクレオチド
プローブ
ポリヌクレオチド
プローブ

低い
△

酵素反応によるシグナル
増幅法を用いる方法

TSA-FISH 法

ポリヌクレオチド
プローブ

菌体の一部分高い菌体を囲うように△
ポリヌクレオチド
プローブ
プローブのネットワーク RING-FISH 法
を用いる方法高い
菌体全体
複数のプライマーin situ LAMP 法

×
複数のプライマー及びプローブ
in situ RCA 法

×低い場合もあり
菌体全体低い場合もあり
菌体全体○
複数のプライマー及びプローブ
cPRINS-FISH 法
標的分子を増幅する方法○
複数のプライマー

菌体全体

高い

熱変性の繰り返しにより細胞が損傷し，菌体形状が維持できない。増幅産物が菌体外に漏11)れだすことで高いバックグランドを伴う。
熱変性の繰り返しにより細胞が損傷し，菌体形状が維持できない。標的産物の増幅効率が15)低く，高い検出率が得られない場合がある。
プローブ設計が複雑であり，任意の検出レンジの設定が困難な場合がある。検出率が 15％ 12)，22)程度しか達成できなかった報告もある。
プローブ設計が複雑であり，任意の検出レン
21)
ジの設定が困難な場合がある。
プローブにより交雑条件の最適化が必要。蛍光の形状から有効性を判断する必要がある。 30)，38)
プローブ合成に標的遺伝子断片が必要である。
検出率が 40％程度と低い。得られる蛍光は菌体の一部分である。プローブ合成に標的遺伝
23)
子断片が必要である。
検出率が 15％程度と低い。得られる蛍光は菌14)体の一部分である。

長谷川

in situ PCR 法

検出率
得られる蛍光検出レンジの柔軟性
プライマーあるいはプローブの種別手法名
感度を高める方法

表 1．遺伝子を検出可能な高感度 FISH 法の特徴と問題点

主な問題点

参考論文

98

他

求され，更に検出率が低い技術が多いのも事実である（検出率とは標的配列を有している細胞数を 100％とした場
合に，FISH 法で検出される細胞の割合のこと）。本項では高感度 FISH 法の中でも，特に遺伝子の検出が可能なものについて取り上げ，それらの特徴と問題点について述べる。
標的の数を増やす方法として，in situ polymerase chain
reaction（PCR）法11)，cycling primed in situ amplification(cPRINS)-FISH 法15)，in situ rolling circle amplification（RCA）法12,22) と in situ loop-mediated isothermal amplification（LAMP）法21) がある。In situ PCR 法と cPRINSFISH 法は，標的遺伝子に特異的に結合するプライマー
やプローブを合計で最低 2 つ選定するだけよく，その組
み合わせによって標的遺伝子を保有する微生物群を網羅的に，あるいは種特異的に検出することが可能である。
また，これら上記 2 つの方法ではオリゴヌクレオチドプ
ローブ（20 mer 程度の鎖長の短いプローブ）があれば標的遺伝子の検出は可能であり，後述するポリヌクレオ
チドプローブ（一般的には 150–200 mer 以上の鎖長のプローブ）を用いる方法と違い，標的遺伝子断片を入手しなくても実験系を確立することができる。しかし，これらの方法では増幅反応に伴う熱変性の繰り返しにより細胞が損傷を受けること，増幅産物が短鎖であるために細胞外に流出することで高いバックグラウンドや偽陽性を伴う可能性があることが知られている22)。その後，等温で増幅反応が進行し，比較的長鎖の増幅産物を生成する
LAMP 法や RCA 法を用いた検出技術が開発されたが，これら方法を適用するには複雑なプライマーの設計などが要求される。このため，網羅的な検出というよりは遺伝学的に近縁な範囲のグループを標的とするのに適している。またこれら標的の数を増やす方法は，増幅反応前に RNase 処 理 の 必 要 が あ る 場 合12) や， 増 幅 反 応 中 にrRNA が消化されてしまう等の理由から rRNA を標的とした FISH 法との同時染色が難しいことが知られている。そこで，シングルセルレベルで視覚的に微生物の系
統と機能を結びつける方法として，1）先ず rRNA を標的とした FISH 法を行い，特定の視野をカメラで撮影する，2）次に遺伝子を標的とした FISH 法による検出を行い，再度 rRNA を標的とした FISH 法で撮影したときと同一視野を探して，カメラで撮影する，3）それらの画像を用いて解析する，というステップを踏む方法が報告されている12)。この他，蛍光物質を細胞内に沈着可能な tyramide signal amplification (TSA)-FISH 法を用いてrRNA を標的とした FISH を行った後，上述の遺伝子検出法を適用するなどが考えられるが，これまでにそのような報告はない。
標的の数を増やさずに検出する方法には recognitionof individual genes (RING)-FISH 法 が あ る30,38)。RINGFISH 法は，RNA ポリヌクレオチドプローブを用いた方法であり，その検出原理はプローブの標的遺伝子との交雑反応中にプローブ同士が交雑し，プローブネットワー
クを形成することで感度が高まることによるものであると考察されている38)。そのため RING-FISH 法では，菌体を覆うようなハロ状の蛍光が得られる特徴を有する。
これまでに rRNA との二重染色や環境サンプルへの適用も報告されている。RING-FISH 法における問題点は

Two-pass TSA-FISH 法を用いた微生物機能遺伝子の視覚的検出技術

シグナルを得るためにプローブが標的遺伝子と特異的に結合し，かつネットワークを形成可能な条件下で交雑反応を行わなければならないため，特異性のコントロール
が難しいことである。この他，ハロ状の蛍光ではないものの非特異的蛍光が見られること，プローブ合成には標的遺伝子の DNA 断片が必要であることなどが挙げられる。
西洋わさびペルオキシダーゼ（horseradish peroxidase;
HRP）を利用した TSA 反応を用いる TSA-FISH 法も，標的の数を増やさない高感度 FISH 法の 1 つである。
TSA 反応は，過酸化水素存在下で HRP の酵素触媒作用によりラジカル化したチラミド化合物が，菌体内のチロシンやトリプトファンといった芳香族アミノ酸と非特異的に共有結合する反応である。チラミドには様々な蛍光物質（FITC や Cy3，Alexa 系色素など）が標識可能であり，二重染色なども可能である29)。TSA-FISH 法は，
rRNA28,32)，mRNA17,26,37)，tmRNA33) そして遺伝子 14,23,39,40)の検出と段階的にその適用範囲を拡大してきた。TSAFISH 法の最大の特徴は，シグナル増幅反応がシンプルであり，反応条件が他の実験系にも容易に適用可能であ
ることである。我々の研究グループはこの TSA 法に着目して研究を進め，2006 年に発表した two-pass TSAFISH 法は，抗原抗体反応を組み合わせ TSA 反応を二度繰り返すことでシグナル強度を飛躍的に向上させた17)。また非特異的増幅を抑制することで，オリゴヌク
レオチドプローブにて mRNA17) や機能遺伝子14) を検出することに成功している。しかしながら，機能遺伝子を標的とした際の検出率は，1 塩基ミスマッチを識別可能
な交雑条件下で 15％程度と低かった。我々の研究と平行するように 2010 年に，Moraru らによって TSA-FISH
法とポリヌクレオチドプローブを組み合わせた遺伝子検出技術が報告された23)。しかし，得られる蛍光は菌体の一部分のみであり，検出率は 40％程度であったと報告している。遺伝子を標的とした TSA-FISH 法において高い検出率を達成できないことは，大きな課題となっている。この他 TSA-FISH 法を適用する場合，サンプル
によっては内在性ペルオキシダーゼ活性を有するものもあり，適切に処理する必要がある13,26,28)。
また，高感度 FISH 法の多くは，シグナル増幅のために分子量の大きい酵素（例えば DNA ポリメラーゼやHRP）やポリヌクレオチドプローブを細胞内に浸透さ99せる必要があり，適切な細胞壁処理を施す必要がある。
しかし，全ての微生物に一様に効果のある細胞壁処理の方法はなく，標的微生物ごとに最適な方法を検討しているのが現状である10,13,16,28,34)。
以上，本項では遺伝子検出が可能な高感度 FISH 法を紹介したが，1）柔軟な検出レンジを達成し，2）十分な蛍光が得られ，3）高い検出率が達成でき，4）rRNA との二重染色が可能な手法と限定すると，この条件を十分に達成可能な手法は今のところない。すなわち，高感度
FISH 法ごとに一長一短があり，目的に合わせて適切な方法を選択して用いているのが現状である。
3.

Two-pass TSA-FISH 法

Two-pass TSA-FISH 法 は Kubota ら が 2006 年 に 報 告した，TSA 反応を 2 回行うことで蛍光強度を著しく上げる方法である17)。図 1 に two-pass TSA-FISH 法による遺伝子検出の原理を示す。まずプローブと染色体を熱変性により一本鎖 DNA にした後，プローブと標的遺伝子を交雑させる。次に HRP 標識抗 dinitrophenyl（DNP）
抗体がプローブに標識された DNP と抗原抗体反応により結合する。続いて DNP 標識チラミドを用いた TSA反応により，菌体内に DNP を大量に沈着させる。続いて再び HRP 標識抗 DNP 抗体を用いた 2 回目の抗原抗体反応を行った後，2 回目の TSA 反応により Cy3 標識
チラミドを沈着させ標的微生物を可視化する。菌体内に沈着したチラミド化合物は菌対外に漏出することはない
ため，in situ PCR 法などのように増幅産物が菌対外に漏出することに伴うバックグラウンドは生じない。
プローブには，二本鎖 DNA ポリヌクレオチドプロー
ブを用いる。RING-FISH 法や mRNA を検出した TSAFISH 法など，ポリヌクレオチドプローブを用いる高感度 FISH 法のほとんどは，一本鎖 RNA ポリヌクレオチ
ドプローブを採用している。しかし RNA プローブを用いると，RNase の混入を防ぐために実験が煩雑になる。
また mRNA FISH と異なり遺伝子検出の場合，標的配列はセンス・アンチセンス鎖の両方で構わないことから，プローブの交雑確率を上げるためにも二本鎖 DNA プ
ローブは有効である。プローブの合成には PCR 法を用い，プローブへの DNP の標識は PCR 反応液中に dUTP-11DNP を添加することで行った。これまでの検討から，

図 1．Two-pass TSA-FISH 法の原理．
①標的遺伝子とプローブの交雑 ② HRP 標識抗 DNP 抗体と DNP 抗原の結合 ③ TSA 反応による DNP 標識チラミドの沈着④ HRP 標識抗 DNP 抗体と DNP 抗原の結合 ⑤ TSA 反応による蛍光標識チラミドの沈着

100

長谷川

dUTP-11-DNP の濃度を高くすると標識効率は上がるが得られる PCR 産物の収量が減り，濃度を高くしすぎると PCR 増幅しなくなることが分かっている。また PCR
反応液の Mg2+ 濃度を高くする事で DNA の増幅効率が上がることから，より高い dUTP-11-DNP 濃度でプロー
ブ合成が行えることを報告している39)。
Two-pass TSA-FISH 法は，Kubota ら，Kawakami らの方法14,17) を引用し，適宜最適化を行った。抗体がスライドに非特異的に結合することでみられる非特異的蛍光が問題になることがあるが，新鮮な抗体を使用することや最適化された抗体の洗浄方法を用いた two-pass TSAFISH 法を用いることで，十分なシグナル‐ノイズ比を達成することが可能である。
4.
4.1.

Two-pass TSA-FISH 法を用いた遺伝子検出

適用可能性と特異性の検討

Two-pass TSA-FISH 法の遺伝子検出技術としての適用可能性及び特異性を確認するために，純粋菌株を用いた検討を行った。モデル微生物は Desulfobulbus propionicus（DSM6523）とした。標的遺伝子は硫黄の酸化・還元サイクルにおいて，アデニリル硫酸の亜硫酸への還元反応，あるいはその逆の酸化反応を触媒する酵素
adenosine-5'-phosphosulfate reductase のアルファサブユ
ニットをコードする遺伝子（apsA 遺伝子）とした。この apsA 遺伝子は，マーカー遺伝子として広く用いられている4,8)。プローブはそのゲノム DNA をテンプレート
として，この apsA 遺伝子に特異的なプライマーペアを用いて合成した。まず 805 bp のプローブを合成し，標的遺伝子の検出を試みたところ，極めて強い蛍光を得る
ことができた。検出率は 99％を超えており，高い検出率を達成した。ネガティブコントロールとして apsA 遺伝子を持たない Escherichia coli を選定し同様の条件で実験を行ったが，E. coli からは蛍光が得られなかったため，標的遺伝子の特異的検出が可能であったと判断した。
次に，プローブの長さが検出にどのような影響を及ぼすかを確認するために，プローブ合成時のプライマーを変更することで 512 bp，137 bp のプローブを合成し，先ほどと同様の実験を行った。プローブが短くなると検出率は低下する傾向を示し，137 bp では検出率は 20％程度となった（表 2）。プローブと標的遺伝子の交雑を促すことを考え，
ストリンジェンシーを低くする，プロー
ブ濃度を上げる等の検討を行ったが検出率の向上は見られなかった。これら結果から，高い検出率を達成するた

他

めにはある程度のプローブ長が必要であることが示唆された。
次に，本手法が相同性の高い遺伝子をどの程度識別可能であるかを検討するために，Dsb. propionicus に近縁な
硫酸塩還元細菌 2 種 Desulfobulbus elongatus（DSM2908，
プローブに対する塩基配列相同性が約 90％），Desulfovibrio vulgaris（DSM644，同約 65％）を用意し，Dsb.
propionicus のみを検出可能な条件の検討を行った。まず，805 bp のプローブを用いたところ，Dsb. propionicus とDsv. vulgaris の識別は可能であったが，Dsb. elongatus
を完全に識別することは困難であった（図 2）。より短
い プ ロ ー ブ の 方 が 特 異 性 が 高 い と 考 え ら れ た が，
512 bp，157 bp いずれのプローブでも同様の結果が得られた（表 2）。川上らがメタン生成古細菌の methly coenzyme M reductase のアルファサブユニットをコードする遺伝子（mcrA 遺伝子）を標的に同様の検討を行った

図 2．Two-pass TSA-FISH 法による硫酸還元菌の apsA 遺伝子の検出．
プローブは 805 bp のものを用いた。
（A）（B）は Dsb. propionicus，（C）（D） は Dsb. elongates，（E）（F） は Dsv.
Vulgaris。位相差視野（A, C, E）と G 励起視野（B, D, F）
はそれぞれ同一視野。露光時間は 20 ms。棒線は 10 μm。

表 2．本手法の特異性と検出率
用いた微生物の遺伝子配列（accession number）

モデル微生物の apsA 遺伝子との相同性（％）

Dsb. propionicus (EF442935)
Dsb. elongatus (AF418146)
Dsv. Vulgaris (Z69372)
E. coli

100
90
65
<<60

図中の +++ は検出率 99％以上， ++detected）を表す。

は 50％以上， +プローブ長の違いによる検出の可否
805 bp
512 bp137 bp
+++
++
N.D.
N.D.
は 20％以下， N.D.

++
+
N.D.
N.D.

+
+
N.D.
N.D.

は検出されない（notTwo-pass TSA-FISH 法を用いた微生物機能遺伝子の視覚的検出技術

ところ，遺伝子相同性で 85％の遺伝子の識別に成功していることから（データ非表示），本手法による識別能
は塩基配列相同性で 89–85％程度であると考えられる。
機能遺伝子の場合，遺伝子配列相同性が 80–90％あればアミノ酸配列上での相同性は高い場合が多く，機能的に同一であることが予想される31)。従って，配列情報から
微生物機能を推定する上では，十分な特異性を有していると考えられる。また，機能遺伝子と rRNA 遺伝子に基づく系統学的分類との関係は遺伝子ごとに異なるが，
mcrA 遺伝子などは属間で 89％程度という報告もあり35)，
本手法は属から科レベルは十分に識別可能であることが示唆された。
4.2.

嫌気性廃水処理汚泥サンプルへの適用

微生物コミュニティへの適用例として，嫌気性廃水処
理汚泥サンプルに本手法を適用し，apsA 遺伝子を保持する微生物の網羅的検出を試みた。高い検出率をもって微生物を検出するためには長鎖のプローブが有効であったことから，汚泥サンプルから抽出した DNA をテンプ
レートして約 800 bp のプローブを合成した。汚泥サン
プルから抽出したバルク DNA をテンプレートとすることで，使用したプライマーセットで増幅される複数種の遺伝子断片をプローブとして用いることが出来る。この様にして合成されたプローブを用いれば，このサンプル中に存在する apsA 遺伝子を保有する微生物群を網羅的に検出することが可能となる。このプローブを用いて検出を試みたところ，一部の菌体から蛍光を得ることができた（図 3）。得られた蛍光は，プローブ交雑時及び洗浄時のストリンジェンシーを高めることで得られなくなったことから，標的遺伝子を特異的に検出していると判断した。得られた蛍光から検出された菌体は様々な形状をしており，このことから複数種の apsA 遺伝子保有
微生物が存在していると思われ，これらは硫酸還元に関わっている微生物群である可能性が示唆された。
4.3.

本手法が高い検出率を達成した理由

2010 年に我々が報告した two-pass TSA-FISH 法とオ
リゴヌクレオチドプローブを組み合わせた方法は，特異的検出条件下でシングルコピー遺伝子の検出率が 15％程度と低かった14)。同年 Hoshino らが報告している insitu RCA 法を用いた方法でも，シングルコピー遺伝子の場合，その検出率は 15％程であったと報告してい図 3．Two-pass TSA-FISH 法による嫌気性廃水処理汚泥中に存在する apsA 遺伝子を保持する微生物の検出．
プローブは汚泥サンプルから抽出した DNA をテンプレー
トとして合成した約 800 bp のプローブを用いた。位相差視野（A）と G 励起視野（B）は同一視野。露光時間は20 ms。棒線は 10 μm。

101る12)。更に 2 つの報告において一致しているのは，マルチコピーである rRNA 遺伝子を標的とした場合，検出率が 50％前後まで上昇することである。このように検出率が低い理由は，ヌクレオチドの交雑・乖離の挙動から説明できる。Tm（melting temperature）は，50％のヌクレオチドが乖離し，残り 50％のヌクレオチドが交雑しているときの温度を指す。二本鎖ヌクレオチドの乖離
は，AT 結合の方が GC 結合に比べ結合力が弱いため，昇温に伴いヌクレオチドの AT を多く含む領域から進行すると考えられている。オリゴヌクレオチドの場合，部分的に交雑した状態は不安定であり，Tm においては，乖離したオリゴヌクレオチドが半数，交雑したオリゴヌ
クレオチドが半数となる36)。すなわちオリゴヌクレオチ
ドプローブは，標的分子に交雑しているか，していない
かということになる。このことは，特異性を上げるためにストリンジェンシーを上げると，交雑するプローブの数が減少することを意味する。従って，rRNA のように菌体内に大量に標的分子が存在する場合，ストリンジェンシーを上げると，1 菌体内で交雑するプローブ数が減
少し，得られる蛍光強度が減少する。しかしながらシン
グルコピー遺伝子を標的とした場合，1 菌体内で 1 コピーしか存在しないため，交雑しているプローブの数が検出率に直結する。例えば Tm 条件下では，理論的に検出率は最大でも 50％となる。rRNA 遺伝子のように数コピー存在する場合は，1 菌体内でプローブが交雑する確率はシングルコピー遺伝子を標的とした場合よりも高くなる
ため，検出率も高くなる。このように，特異的条件下で極めて存在数の少ない分子を標的とした場合，高い検出率を達成することは困難であると考えられる。
一方，ポリヌクレオチドの場合は，塩基数が多いため部分的に交雑した状態でも比較的安定であり，その Tm
は，乖離領域（AT を多く含む領域など）と交雑領域（GCを多く含む領域など）のヌクレオチド数が同じ時を言う36)。よって，高いストリンジェンシー条件下でもプローブと標的分子との交雑塩基数は減少するものの，交雑しているプローブそのものの数は減少しない。このため，オリゴヌクレオチドに比べ特異性は低下するものの，存在数の少ない機能遺伝子を高い検出率で検出するには，ポリヌクレオチドプローブを用いることに利があると言える。
しかし，我々と同様にポリヌクレオチドプローブを用いている Moraru らの方法では高い検出率を達成できていない23)。両者の違いを整理すると，1）感度が不足している（プローブ長や TSA 反応の回数），2）プローブ
及び染色体の熱変性が不十分である，などが挙げられる。
我々も短いプローブの時には検出率が低下したことから（表 2），ポリヌクレオチドプローブの長さは重要なファクターであると言える。また，長いプローブを用いてもTSA-FISH 法では低い検出率しか得られなかったことから（データ非表示），TSA 反応を 2 回行い，高感度化す
ることも重要なファクターであると言える。本研究においては比較的長いプローブを使い，また two-pass TSAFISH 法のプロトコールも，非特異的なシグナルの増幅を抑え，特異的なシグナルのみを増幅する様に最適化したことで，シグナルの高感度化が達成でき，それが高い検出率に繋がったと言える。

102

長谷川

5.

本手法の位置づけと今後の展望

我々の開発した two-pass TSA-FISH 法とポリヌクレオ
チドプローブを組み合わせた方法は，高い検出率を達成
し，菌全体から強い蛍光で検出することが可能であった。
本報で報告した方法は，TSA 法の検出率が低いという問題を克服し，TSA 法を汎用性の高い機能遺伝子の検出技術にまで引き上げることに成功した。
また，本手法は遺伝子相同性で 89–85％程度のものを識別できる可能性がある。これまでに報告されているポ
リヌクレオチドプローブを用いた遺伝子検出技術では，特異性について詳細な検討がなされておらず，また個々の遺伝子を検出するよりも相同性の近い遺伝子を網羅的に検出することに主眼が置かれていた23,30)。本手法では，比較的近縁な遺伝子でも識別でき，また複数のプローブを混ぜ合わせて用いることで広いグループを網羅的に検出することも可能である。これらから，メタゲノム解析
等で得られた標的遺伝子配列からその遺伝子を保有する
微生物を特異的に検出したい，あるいは，あるタンパク
質のモチーフ部位から設計したプライマーを用い，同一機能を持った微生物群を網羅的に検出したい，といったニーズにも柔軟な検出レンジをもって対応できると思われる。
最後に，現在我々が取り組んでいる課題の 1 つに，まず TSA-FISH 法により rRNA を標的とした FISH 法を行った後に本技術を適用して，機能遺伝子と rRNA を二重染色することにより微生物の機能と系統を結びつける技術の開発がある。この他に，MAR-FISH 法19,25) や
SIMS-FISH 法20,24) などの機能推定技術，フローサイト
メーター6) やマイクロマニュピレーター3,9)，magnetoFISH 法27) などの微生物回収技術への適用も考えられる。
これらの技術との組み合わせた微生物生態解析への応用研究はまだ行われていないが，その可能性は十分に秘めていると思われる。今後はそれらへの適用のための技術的課題をクリアしていき，本手法の機能遺伝子検出技術としての可能性を広げていくことが重要であると考えて
いる。
謝

辞

本研究は，科学研究費補助金，環境省環境研究総合推進費（S2-03），（財）クリタ水・環境科学振興財団から研究費補助を受けた。ここに記して感謝いたします。
文献1) Amann, R. and B.M. Fuchs. 2008. Single-cell identificationin microbial communities by improved fluorescence in situ
hybridization techniques. Nat. Rev. Microbiol 6: 339–348.
2) Amann, R.I., W. Ludwig, and K.H. Schleifer. 1995. Phylogenetic
identification and in situ detection of individual microbial cells
without cultivation. Microbiol. Rev. 59: 143–169.
3) Ashkin, A. and J.M. Dziedzic. 1987. Optical trapping andmanipulation of viruses and bacteria. Science. 235: 1517–1520.
4) Ben-Dov, E., A. Brenner, and A. Kushmaro. 2007. Quantification of sulfate-reducing bacteria in industrial wastewater, by
real-time polymerase chain reaction (PCR) using dsrA andapsA genes. Microb. Ecol. 54: 439–451.

他
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