No.099 / 2001

■Review

蛍光標識プラスミドを用いたプラスミド/キトサン複合体の発現機構の解析
佐藤智典■Topics on Chemistry

糖鎖合成の最近の展開−酵素を用いたsweet success−

佐々本一美

■連載

実用的蛍光誘導体化9
山口政俊・能田 均

News No.99(2001)

目次
Review
蛍光標識プラスミドを用いたプラスミド／
キトサン複合体の発現機構の解析
慶應義塾大学理工学部 佐藤 智典 ...................................... 1
実用的蛍光誘導体化 9
福岡大学薬学部 山口 政俊、能田 均 ................................... 6
Topics on Chemistry
糖鎖合成の最近の展開−酵素を用いた sweet success − ........................................... 5
Column結合定数を求めてみよう ......................................................... 9Commercial
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初夏の同仁化学研究所

News No.99(2001)

蛍光標識プラスミドを用いたプラスミド／キトサン複合体の発現機構の解析
Analysis for the mechanism on the expression of plasmid/chitosan complexes using FITC-labeled plasmid

佐藤 智典(Toshinori Sato)
慶應義塾大学理工学部

遺伝子のデリバリーシステム
遺伝子治療を目指した遺伝子、リボザイムやアンチセンス核酸の細胞内導入法の開発が活発に研究されている。遺伝子治療ではADA欠損症のような先天的な遺伝子疾患に加えて癌やエイズなどが対象疾患として大きな割合を占めている。癌の遺伝子治療の例として、
東京大学医科学研究所ではサイトカインを発現するレトロウイルス
ベクターを用いた ex vivo 法による腎癌の免疫遺伝子治療が行われた。またアデノウイルスベクターでは癌細胞を選択的に殺す遺伝子を組み込み腫瘍部に直接注入する方法も行われている。このように現在、遺伝子キャリアーとして多く用いられているのはウイルスベ
クターである。ウイルスベクターは本来ウイルス自身が持つ特性を利用しており高い発現活性を有している。しかしながらウイルスベ
クターにおいては、数々の問題点も報告されている。例えばアデノ
ウイルスベクターは、免疫原性のために繰り返し投与できない。レトロウイルスベクターにおいては宿主の細胞の形質転換を誘起し癌化させることが考えられる。アデノ随伴ウイルスベクターにおいては運べる遺伝子情報の量が少ない。さらにはウイルスベクターには病原性という大きな問題も現れる可能性がある。そこで安全でかつ効率の良い遺伝子キャリアーとして人工的に作製した遺伝子キャリ
アーの開発が要求されている。
人工的な遺伝子導入法としては、機械的に細胞に導入する方法と化学的なキャリアーによる導入方法の二種類がある。機械的に遺伝子を導入するものとしては、電位差を利用して細胞内へ DNA を導入するエレクトロポーレーション法と細胞内へマイクロシリンジを通して DNA を導入するマイクロインジェクション法がある。化学的なキャリアーの研究では、リポソームやカチオン性高分子を用いて遺伝子の細胞内導入を行っている。名古屋大学医学部ではリポソーム法を用いた脳腫瘍の遺伝子治療が試みられている。高分子
キャリアーとしては、ポリリジン、ポリエチレンイミン、キトサン、[ Summary ]Aminopolysaccharides such as chitosan and polygalactosamine (pGaIN) were used to transfer
luciferase plasmid into tumor cells. Chitosan largely enhanced the transfection efficiency of
luciferase plasmid (pGL3), while pGalN did not at all. Transfection efficiencies of the pGL3/
chitosan complexes were dependent on pH of culture medium, stoicheometry of pGL3:chitosan,
serum, and molecular mass of chitosan. The transfection mechanism of plasmid/chitosan
complexes was analyzed by using FITC-labeled plasmid and sulforhodamine-labeled chitosan.
After which, plasmid/chitosan complexes are endocytosed, and possibly released fromendosome due to swelling of lysosomal in addition to swelling of plasmid/chitosan complex,causing the endosome to rupture. Finally, complexes were also observed to accumulate in the
nucleus using a confocal laser scanning microscope.

キーワード：
遺伝子治療、遺伝子導入、蛍光プローブ、フローサイトメーター、
共焦点レ−ザ−顕微鏡

合成ペプチド、あるいはデンドリマーなどが報告されている。レセ
プター介在型のキャリアーを開発するために糖やトランスフェリンによる修飾も行われている。またアデノウイルスやインフルエンザ
ウイルス、センダイウイルスの膜タンパク質をリポソームに組み込
むことによりウイルスの持つ細胞指向性やエンドソームからの放出といった機能を利用することも行われている。しかしながら、化学的キャリアーにおいてはウイルスベクターと比較して安全性は高いが、発現活性が低いのが欠点である。

キトサンによる遺伝子導入
キトサンは、カニやエビの甲羅のキチンを脱アセチル化したものである。キチンは、菌界、植物界、動物界に広く存在しており、バイオマス資源としてはセルロースに匹敵する。キトサンは人工皮膚や止血剤など医学的材料として注目されており、ドラッグデリバ
リーシステムや薬物の徐放剤としての研究も行われている。最近では遺伝子導入試薬として注目されてきている。筆者らは 1996 年にプラスミド／アミノ化多糖複合体のガン細胞や血液細胞への導入について検討し 1）、翌年にはプラスミド／キトサン複合体は市販の遺伝子導入試薬リポフェクチンより高い遺伝子発現活性を持つことを確認していた。同時期に報告された他の論文では、キトサンを用いても発現活性が非常に低かったが 2）、われわれの実験ではキトサン
は非常に優れたキャリアーであることが示された。その理由としては、キトサンの分子量、複合体の作製方法、あるいは細胞への感染
実験条件を詳細に検討したことが挙げられる 3）。1998 年になって、キトサンを用いた遺伝子導入の実験が複数発表され急激に注目されるようになり4—6）、1999年には経口投与による遺伝子発現を確認した論文が出された 7）。
筆者らの研究では、キトサンによる発現活性を確認した後は発現機構の解析を中心に行ってきた 8）。遺伝子が細胞に導入されて発現1

News No.99(2001)

がおきるまでの過程は、1）細胞内への導入、2）エンドソームからのリリース、および 3）核への集積、に分けることが出来るであろう。細胞内に導入された遺伝子の輸送を観察するには大きく分けて二つの方法がある。一つは透過型顕微鏡 (TEM, Transmission Electron Microscopy) であり、もう一つは共焦点レーザー顕微鏡 (Confocal Laser Scanning Microscopy) である。透過型電子顕微鏡を用いるには、固定、包埋、切片作製、染色、観察、写真撮影などという一連の作業手順が煩雑である。一方、共焦点レーザー顕微鏡では、細胞小器官での局在は観察できるが、分解能力はTEMに及ばない。
しかしながら細胞を固定することなく生細胞のままでの観察が可能である事は大きな利点である。なぜなら、固定化するだけで細胞での局在は変化してしまう可能性があるからである。

従来法では満足できるものが無かったので、独自の方法を開発することにした。
筆者らが注目したのはジアゾカップリング法である。
この方法により、1988 年に J. M. Rothenberg は DNA のグアニン
塩基の 8 位にビオチン修飾を行い 14）、また小林らは DNA に糖の導入を行っている 15，16）。そこで、このジアゾ化反応を用いることでプラスミドに蛍光修飾を行うことにした 17）。合成スキームは Fig.1 に示した。2-(4-Aminophenyl)ethylamine と FITC (Ⅰ型)を DMF 中室
温で一晩撹拌し、これに NaNO2 を加えてジアゾ化した。次に Luciferase plasmid とジアゾ化した FITC をホウ酸バッファー (pH 9.0)中で反応させた。これによりプラスミド１分子当たりFITC が 約１個導入された。得られた FITC 修飾プラスミドは、発現活性の低下が認められず、フローサイトメーターや共焦点レーザー顕微鏡での観察に十分な蛍光強度を有していた。一方、キトサンはスルホロー
ダミンで蛍光修飾した。

蛍光標識法

遺伝子発現のメカニズム解析 3, 8）

共焦点レーザー顕微鏡は DNA の細胞内局在の観察に頻繁に用いられている。直鎖状の DNA の蛍光修飾には DNA の 5’ 末端のリン酸基に蛍光ラベルする方法が報告されている。しかしながら環状プラスミドの蛍光標識は一般には行われておらず、遺伝子デリバリーでの発現機構の解析には、モデル的に線状 DNA やオリゴ核酸を用いている例もある。環状プラスミドの蛍光標識には、酵素的に標識する方法 9）、光架橋 10）、およびプリンを取り除いた
部位に蛍光修飾をする方法 11） などが報告されている。また発現活性を保ち、高次構造を保った蛍光修飾プラスミドの作製法として、cyclopropapyrroloindole リンカーを用いて DNA と蛍光標識物質を共有結合させる方法 12）、および DNA リボースのアルデヒ
ド部位にアジドにより蛍光標識物質を反応させる方法も報告されている 13）。しかしながら、これらの方法においては、リンカーの構造が複雑であり UV 照射下で反応する必要があった。

1）細胞への取込
i) キトサン分子量依存性と他の高分子キャリアーとの比較
Fig. 2 にはSOJ 細胞でのルシフェラーゼプラスミドの発現と細胞への取込効率の比較を行った結果を示している。
発現活性に対しては、SOJ 細胞以外にも Hela ヒト子宮癌細胞，B16 マウス黒色腫細胞，A549 ヒト肺癌細胞においてキトサンの分子量依存性がみられ40 kDが最適であった。またフローサイトメーターにより得られた取込量の結果にも分子量依存性が見られている。一方、ポリガラクトサミンや DEAD- デキストランでは発現活性が非常に低く、特に DEAD- デキストランで高い取込が見られるにも関わらず発現が非常に低いことが示された。

Fig.1 Synthetic procedure of FITC-labeled plasmid.

2

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Fig.2 Luciferase Activity and Cell Uptake of Plasmid/Chitosan (1:5) Complexes(SOJ Cells cultured in RPMI1640 containing 10% FBS, [FITC-Plasmid] =[Plasmid] = 1mg/ml,Transfection Time = 4 h, Plasmid; Normalized to 100)ii)血清依存性
通常の遺伝子キャリアでは血清存在下で発現の低下する例が多い。しかし、キトサンでは 10-20%FBS 存在下において高い発現活性が見られた。一方、遺伝子の取込効率は無血清で最も高く血清の添加により徐々に減少していた。これにより、血清の存在に
より細胞の機能が高まり発現活性の向上が見られたものと推察できる。 分子量や血清の影響以外にも培地の pH、複合体のカチオ
ン・アニオンの比、プラスミドの濃度などの条件での測定を行っており、取込効率との相関性が見られている。

2）共焦点レーザー顕微鏡によるプラスミドの細胞内局在の観察
プラスミド／キトサン複合体をHela細胞に投与した時のFITCプラスミドの局在を Fig.3 に示した。2 時間後にはFITC の蛍光はエンドソームと思われる所に観察された。このことは、エンドソームマーカーとして用いられるスルホローダミン修飾デキスト
ランとプラスミド／キトサン複合体の蛍光が細胞質内で同じ局在を示した事からも支持された。また、6 時間後においては複合体が細胞の盛り上がった核と思われる場所に局在していることが観察された。同時に、スルホローダミン修飾キトサンの蛍光も核で見られたことから、複合体の状態で核に局在すると考えられる。
このように、蛍光標識プラスミドは細胞に導入されたときの輸送を追跡するのに非常に有効であった。
筆者らのこれまでの研究
では、蛍光標識されたオリゴ核酸やサケ精子の DNA を用いてきた。しかし、フローサイトメータでの取込効率の測定ではサケ精
子 DNA とプラスミドでは異なることが示されており、実際に発現を見ているプラスミドを蛍光標識して取込効率や細胞内局在を観察することの意義は大きい。

まとめ
蛍光標識したプラスミドやキトサンを用いた実験などを中心に、プラスミド／キトサン複合体の発現のメカニズムは以下のように提唱できる。１）細胞への取込はエンドサイトーシスで行われている。２）エンドソームからは、バッファリング効果かスポンジ効果により複合体のままリリースされている。その間、複合体の酵素による分解は抑制されている。３）核への集積は比較的早い

Fig.3 Subcellular Distribution of FITC-Plasmid/Chitosan(1:5) Complexes in Hela Cells (Hela Cells Cultured in MEM Containing 10% FBS,
[Plasmid]=10mg/ml,Chitosan; M.W.40 kD,Incubation Time=1h,Post Incubation Time 1h or 5h)3

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時間で起き、複合体のまま移行している。このようにキャリアーが遺伝子発現を高めるメカニズムを解析することで、更に効率を高めるためのキャリアーの修飾や新たなキャリアーの設計に反映させることが出来るであろう。
ルシフェラーゼ遺伝子は発現を定量化するためのモデル遺伝子
であるが、我々はガン細胞の増殖を抑制するような遺伝子とキトサンの複合体を用いた細胞実験も行っている。ヒトの膵臓癌細胞を用いた実験では、市販の遺伝子導入試薬であるリポフェクチン
では脂質の毒性のみ見られたが、キトサン複合体では遺伝子発現による細胞の増殖抑制が観察された。このようなキトサンの発現
活性と生体内での安全性を考えると、癌の遺伝子治療への応用も試みたいと思っている。動物での投与実験を行う際にも、蛍光標
識プラスミドは組織レベルでの取込や局在の観察にも利用できると期待される。

著者紹介
氏名：佐藤 智典（Toshinori Sato）
年齢：42 歳慶應義塾大学理工学部 応用化学科 助教授
出身大学：九州大学修士
学位：工学博士（京都大学）
現在の研究テーマ：
1）生体膜の構造と機能解析
2）バイオコンビナトリアル合成法による糖鎖ライブラリーの構築
3）ファージライブラリー法による感染阻害剤の開発
4）遺伝子治療のためのデリバリーシステムの開発
主な学会活動：FCCA：http://www.gak.co.jp/FCCA/indexj.html
生命化学研究会：http://www-pclab.ph.tokushima-u.ac.jp/FBC/FBC-home.html

参考文献

遺伝子・デリバリー研究会：http://bio.ch.nagasaki-u.ac.jp/gene/

1) T. Sato, N. Shirakawa, H. Nishi, Y. Okahata, Chem. Lett., 1996, 725.

研究室 web site：http://www.applc.keio.ac.jp/~sato/lab/index-jp.html

2) S. Venkatesh, T. J. Smith, Pharm. Dev. Technol., 2, 417(1997).

連絡先：〒 223-8522 横浜市港北区日吉 3-14-1
Tel:045-566-1771
e-mail:sato@applc.keio.ac.jp

3) T. Sato, T. Ishii, and Y. Okahata, Biomaterials, 2001, in press
4) P. Erbacher, S. Zou, T. Bettinger, A. M. Steffan, J. S. Remy, Pharm. Res.,15, 1332 (1998).
5) K. Y. Lee, I. C. Kwon, Y. H. Kim, W. H. Jo, S. Y. Jeong, J.Control. Release,51, 213 (1998).
6) F. C. MacLaughlin, R. J.Mumper, J.Wang, J. M.Tagliaferri, I.Gill, M, Hinchcliffe.
A. P. Rolland., J.Control. Release, 56, 259 (1998).
7) K. Roy, H. Q. Mao, S. K. Huang, K. W. Leong, Nat. Med., 5, 387 (1999).
8) T. Ishii, Y. Okahata, T. Sato, submitted to Biochim. Biophys. Acta
9) M. A. Zanta, P. Belguise-Valladier, J. P. Behr, Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A.,
96, 91 (1999).
10) M. Malecki, Scanning Microscopy Supplement, 10, 1 (1996).
11) G. M. Makrigiorgos, S. Chakrabarti, A. Mahmood, Int. J. Radiat. Biol., 74, 99(1998).
12) M. G. Sebestyen, J. J. Ludtke, M. C. Bassik, G. Zhang, V. Budker, E. A.
Lukhtanov, J. E. Hagstrom, and J. A. Wolff, Nat. Biotechnol., 16, 80 (1998).
13) C. Ciolina, G. Byk, F. Blanche, V. Thuillier, D. Scherman, and P. Wils, Bioconj.

Chem., 10, 49 (1999).
14) J. M. Rothenberg, M. Wilchek, Nucleic. Acids. Res., 16, 7179 (1988).
15) T. Akasaka, K. Matsuura, N. Emi, K. Kobayashi, Biochem. Biophys. Res.

Commun., 260, 323 (1999).
16) K. Matsuura, T. Akasaka, M. Hibino, K. Kobayashi, Chem. Lett., 1999, 247.
17) T. Ishii, Y. Okahata, and T. Sato, Chem. Lett., 2000, 386.

4

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Topics on Chemistry
糖鎖合成の最近の展開−酵素を用いた sweet success −（株）同仁化学研究所

佐々本 一美糖鎖生物学が非常に注目されており、その機能に着目した薬剤
糖鎖の多様性はタンパク質や核酸の開発も盛んに行われている1）。
と大きく異なっている。タンパク質に対する核酸の様に、構造を一義的に決定する情報分子が存在しないし、また、一級および二級水酸基からのみ成る糖自身の構造上の多様性も特異な点である。
このため、糖鎖を自由に合成する技術はタンパク質や核酸と比べて大きく立ち遅れていたが、最近になって固相合成についての報告が多くなされており、自動化がいよいよ現実のものとなってきた。とは言え、研究者が望み通りの糖鎖を自由に自動合成できるレベルではなく、依然として主流は酵素を利用する合成である。酵
素法は化学合成と比べ、高い選択性や穏和な反応条件、また、面倒な保護・脱保護を必要としないなどメリットは大きく、これまで多くの糖鎖合成に利用されてきた。
酵素法の場合、
グリコシド結合形成を触媒する酵素は、glycosidaseと glycosyltransferase の 2 種類であるが、glycosidase は反応が逆向きなので収量が低く、普通は glycosyltransferase が利用される（図 1）。この場合の基質は糖ヌクレオチド（酵素が動物由来の場
合、ヌクレオチドは UDP または GDP）であるが、最大の課題は基質が高価なことである（例えば、UDP-galactose は 5 mg で 1
万円以上）。glycosyltransferase がクローニングによって容易に入手できるようになってきた現在、基質の供給の問題はさらに深刻になっている（安価に化学合成する方法も Hindsgaul2）らによって報告されているが、生物・医学研究者に恩恵をもたらしてはいな
いようだ）。

これらの問題を回避する代表的な二つのアプローチを紹介した
い。Wang3） らのグループは、galactoside の生合成経路上の 4 種類の酵素（GalK, GalPUT, GalU, PK）を大腸菌で発現させ、HisTag によって樹脂に固定し、糖ヌクレオチドの再生システムを構築した（図 2）
。出発原料の acceptor, PEP, galactose（および、触媒量の ATP, UDP,Glc-1-P）を用い、生理的条件下、樹脂およびglycosyltransferse と 24 ℃、4 日間反応させる。樹脂は再生も可能である。これによって、種々の galactoside を 70 % 以上の収率で得ている。

図 2: UDP-Gal の生合成経路

一方、Blixt4) および Wang5) らのグループはそれぞれ独立に、基質としてもっと安価な UDP-glucose（数十倍安い）を利用する方法を報告している。 galactosyltransferase と UDP-glucose-4'-epimerase（galactose 再生酵素）との融合タンパク質を大腸菌で発現させることにより、gスケールの経済的な糖鎖合成を実現している。これらは、糖のもつ可能性をさらに引き出すためにも重要なアプローチである。

参考文献
1) 例えば、J. Alper, Science, 291, 2338 (2001).
2) M. Arlt and O. Hindsgaul, J. Org. Chem., 60, 14 (1995).
3) X. Chen, J. Fang, J. Zhang, Z. Liu, J. Shao, P. Kowal, P. Andreana, and P.
G. Wang, J. Am. Chem. Soc., 123, 2081 (2001).
4) O. Blixt, J. Brown, M. J. Schur, W. Wakarchuk, and J. C. Paulson, J. Org.

Chem., 66, 2442 (2001).
5) J. Fang, X. Chen, W. Zhang, J. Wang, P. R. Andreana, and P. G.Wang,

J. Org. Chem., 64, 4089 (1999).

図 1：galactosyltransferase（GalT）によるグリコシド形成反応

5News No.99(2001)

実用的蛍光誘導体化9に対して、エキシマー蛍光における極大波長は475 nmへと長波長シフトする。このように、エキシマー蛍光はストークスシフト（励起極大波長と発光極大波長の差）が大きいという好ましい蛍光特性がある。これに加えて、従来の蛍光誘導体化では困難であった対象物質 1 分子あたり一個の蛍光基が導入された誘導体と複数個導入された誘導体を分光学的に識別できるであろうことに着目し、生体ポリアミンをモデルにエキシマー蛍光誘導体化法の開発を試みた（図 2）。この方法では、複数のピレンが導入された目的成分
をエキシマー蛍光検出するとき、試薬自身やモノアミンの誘導体
はモノマー蛍光しか発しないので妨害とならない。

福岡大学薬学部

山口政俊・能田均

前回までの「実用的蛍光誘導体化」において、通常用いられている蛍光誘導体化について述べてきた。最近、この通常の蛍光誘導体化に、時間分解や蛍光偏光などの種々の蛍光特性を積極的に取り込み、感度や選択性の向上を図る試みがなされている。筆者
らは、通常の蛍光誘導体化にエキシマー蛍光現象を導入し、エキシマー蛍光誘導体化という新しい概念に基づく方法論を考案した。
本法が、生体実試料中の生体成分分析に極めて有効かつ実用性の高い方法であることを実証したので、本稿で述べる。
一般に蛍光測定は比較的低濃度（1µmol/L 以下）で行うので、蛍光分子同士の相互作用が観測されることは少ない。しかし、特定の条件下において蛍光分子（基）が近接すると、互いに相互作用して蛍光の消光（原因は多種）、蛍光共鳴エネルギー移動、励起会
合体の形成・発光などがおこる。これらの蛍光分子間の相互作用
は互いが近接しないと観測されないことから、高分子化合物（蛋
白質、核酸、生体膜など）等及びそれらと相互作用する物質をそれぞれ蛍光修飾して、形態、動態の解析に用いられてきた。著者
らはこれらの蛍光分子間の相互作用を低分子生理活性物質の誘導体化と組み合わせて高選択的かつ高感度な分析法の開発を試みている。

図1

ピレンのエキシマ−蛍光図 2 エキシマ−蛍光誘導体化の概念

12．エキシマー蛍光誘導体化
12.1. エキシマー蛍光とはピレンなどの多環芳香族が互いに近接するとき、一方が光を吸収して励起状態となると、他方の基底状態のピレンと会合して励起会合体（エキシマー）を形成する。このエキシマーからの発光をエキシマー蛍光という（図 1）。エキシマー蛍光は 2 個のピレン分子の間でおこる分子間エキシマー蛍光と 1,3- ジピレンプロパンのように同一分子内に存在する２個のピレン基の間でおこる分子内エキシマー蛍光があり、前者は高濃度（一般に 1mM 以上）でしか観測されないが、後者は低濃度でも観測される。ピレンの場合、通常のモノマーからの蛍光は375 nm付近に発光極大波長があるの

6

12.2. ポリアミンのエキシマー蛍光誘導体化 1）
生体ポリアミン（Chart 1 参照）は、分子内に 2 〜 4 個のアミノ基を有している。従来の蛍光誘導体化法では、生体中の多くのモ
ノアミン類（アミノ酸類を含む）も同時に誘導体化されて同様の蛍光を与えるので、これらとの分離のため試料の前処理や HPLC
分離条件が煩雑にならざるをえなかった。そこで上記のエキシ
マー誘導体化を試みた。

News No.99(2001)

Chart 1 Procedure for the excimer fluorescence derivatization of polyamines
Sample solution*
1M K2CO3
5 mM PSE in CH3CN

200 µL
10 µL
200 µL

Heat at 100℃ for 20 min
Reaction mixture
Inject into HPLC(20 µL)*THF:DMSO:H2O=1:2:1(V/V)
Polyamines Structure

Abbreviation

Putrescine H2N(CH2)4NH2

Put

Cadaverine H2N(CH2)5NH2

Cad

Spermidine H2N(CH2)3NH(CH2)4NH2
Spermine

H2N(CH2)3NH(CH2)4NH(CH2)3NH2

Spd
Spm

HPLC conditions
Column; TSKgel Super Octyl(100x4.6 mm I.D., 2 µm)
Mobile phase;50-80% CH3CN(0-20 min,v/v)
Flow rate;1.0 mL/min
Fluorescence measurement;Excimer fluorescence:Ex345 nm,Em475 nm.

図 3. Chromatograms of the PSE derivatives of polyamines and monoamines.
Concentrations(pmol/injection):Put and Cad (1),Spd(5),Spm(10),monoamines(50).

7News No.99(2001)

誘導体化操作をChart 1に示す。アミノ基用ピレンラベル試薬としては PSE が市販されており、それをそのまま用いている。この条件で誘導体化を行った場合に、一級、二級アミンを問わず、全てのアミノ基にピレンが導入されていることをLC-MSにより確認している。また、これらの誘導体は全てエキシマー蛍光を発する
ことも確認された。
この方法の選択性を検証するために、ポリアミンとモノアミン
をそれぞれ Chart 1 に従って誘導体化して HPLC に付し、エキシマー蛍光検出及び比較のためにモノマー蛍光検出したときに得られるクロマトグラムを図 3 に示す。本法で用いるエキシマー蛍光検出を行った場合には、ポリアミンのピークが観測されているのに対して、モノアミンのピークは観測されず、試薬ピークも比較的小さくなる（試薬は極めて高濃度であるので、分子間エキシマー
蛍光によるピークが出現している）。それに対してモノマー蛍光検
出では、モノアミンのピークは観測されるが、多くのブランクピー
クが出現するので高感度な分析は困難と思われる。以上の高い選択性に加えて、この方法はオンカラムで fmol レベルの感度も有しているので、従来法より簡便な前処理で生体試料（血液、尿）中
ポリアミンの定量に適用できると考えている。

12.3. 塩基性アミノ酸のエキシマー蛍光誘導体化 2）
塩基性アミノ酸［オルニチン（Orn）、リジン(Lys)］も、ポリア
ミンと同様に分子内にある二つのアミノ基をPSEでピレンラベル
することによりエキシマー蛍光検出できる。誘導体化は、ポリア
ミンの場合より緩和な条件で進行する。高い選択性を活かして、希釈尿をそのまま誘導体化するだけで、健常人の尿中塩基性アミノ酸が定量できる（Chart 2、図 4）。これら以外のアミノ酸のピークは観測されない。

Chart 2 Procedure for the derivatization of urinary basic amino acids
Urine (100-times diluted)
100 µL
50 mM Triethylamine
10 µL
1 mM PSE (DMSO)
100 µL
Warm at 40℃ for 30 min
Dilute 10 times with mobile phase
Reaction mixture
Apply onto HPLC (20 µL)

HPLC conditions
Coumn: TSKgel Super ODS ( 100 × 4.6 mm I.D., 2µm, Tosoh)
Mobile phase: CH3CN-H2O-CH3COOH (55:45: 1, v/v)
Flow rate; 1.0 mL/min
Fluorescence detection: Ex 345 nm, Em 475 nm

8

図 4 Chromatograms obtained with a normal human urine
Concentrations(nmol/ml urine):ornithine,13.2;lysine,234.

本法は、ポリアミンや塩基性アミン以外に、基本的には同一分
子内に複数個のアミノ基を有する生体アミン（ヒスタミンなど）や医薬品（トリエンチンなど）にも適用可能で、すでに実用されている。
さらに、アミノ基以外の多くの官能基にも適用できる。次回は、ジカルボン酸、ポリフェノールなどについて述べる。
参考文献
1) H. Nohta et al., Anal. Chem., 72, 4199(2000) .
2) H. Yoshida et al., Anal. Sci., 17, 107(2001) .

追記）
前回の「実用的蛍光誘導体化 8」において、重要な参考文献の記述を忘れていましたので、ここで改めて紹介させていただきます。
11.2. 糖1) p-MOED：Y.Umegae et al., J. Chromatogr., 515, 495 (1990).
2) OMB-COCl：H. Nagaoka et al., Anal. Sci., 5, 525 (1989).
11.4. グアニンヌクレオチ(シ)ド3) PGO：M. Kai et al., Anal. Chim. Acta, 207, 243 (1988).
11.5. ピリジンヌクレオチ(シ)ド4) Br-DMEQ：M. Yamaguchi et al., Anal. Sci., 3, 75 (1987).
他の項目については、次の文献（総説）を参照いただきたい。
5) Y. Ohkura et al., J. Chromatogr. B, 659, 85 (1984).

News No.99(2001)

Column結合定数を求めてみよう（株）同仁化学研究所

何げなく目にする結合定数も、どうやって計算するのか知らない場合が多い。学生のころ習ったはずだが、実際に自分で計算してみないとなかなか身につかない。最もよく遭遇するケースとして、次のような１：１のキレート生成反応を考えてみよう。
[ML]
M+L→
← ML （KML = [M] [L] ）............................ (1)
ここで、M は金属、L は配位子、KML は結合定数（この場合は錯体の安定度定数）であるが、別にキレート生成でなくても勿論構わない。今、金属の初濃度を [M]0、配位子の初濃度を [L]0 とした場合、[L] 0 を一定にして[M] 0 をゼロから徐々に増やし、吸光度（A）の変化を測定する（図 1）。ここでは例として吸光度が変化するケースを想定しているが、蛍光強度でも、NMR のケミカルシフトでも、要するに濃度と一次の対応をしているシグナルであれば、何でも構わない。

佐々本 一美のように書き換えることができる。これで、求めたい 3 つの未知数を含む式が揃った。後は、中学校で習った (3) と (4)' 式の一次の連立方程式を[L],[ML]について解くと、[ML] =[L] =(A - A0)[L]0 ...............................（5）(A ∞ - A0)(A ∞ - A)[L]0 .................................（6）(A ∞ - A0)

得られた [ML] を (2) 式に代入すると、[M] = [M]0 -(A - A0)[L]0 ......................（7）(A ∞ - A0)

これから KML（= [ML] / [M] [L]）が求まるが、普通は、KML[M] = [ML]/ [L] のように置き換え、[M] に対して [ML] / [L] をプロットする。
つまり、(A - A0) ..................
（8）(A ∞ - A)(A - A0)（ここで α =）(A ∞ - A0)
KML ([M]0 - α[L]0) =とおき、[L]0 一定条件下、[M]0 を変化させ、A、A0、A ∞ を実測し、下図のプロットの傾きから結合定数（KML）を求めることができる。

（図 1）

A0 は金属がないときの吸光度（つまり配位子のみの吸光度）、A ∞は全て結合したときの吸光度（実際には、これ以上変化しないときの値）を表しているが、これらはもちろん実測可能な値である。
(1) 式の K ML を求めるには、[M]、[L]、[ML] の 3 つの平衡状態での濃度を求める必要がある。そこで次の 3 つの式を用いることにしよう。
[M]0 = [M] + [ML] ....................（2）[L]0 = [L] + [ML] .....................（3）A = εL[L] + εML[ML] .................（4）初濃度[M]0、[L]0 は既知であり、測定の間じゅう一定である。問題は (4) 式で、 εL、 εML を各々、配位子および錯体のモル吸光係数とすると、吸光度 A はそれらの和として表される。 εL、 εML は別
途求めなくても、次のように A0、A ∞ を用いて表すことができる。
すなわち、A0 = εL[L]0、A ∞ = εML[L]0 なので（ちょっと考えるとすぐに思いつく）、(4) 式は、（図 2）(8)式は吸光度(A)の代りに、蛍光強度(F)やケミカルシフト(δ)を用いても同様に成立する。
また、ある系中の金属（ターゲット分子）濃度を既存のキレーター（プローブ分子）を用いて求めたいような場合には、[M]O が未知、KML が既知なので、式(1),(5),(6)より、
[M] =

[ML]
1
(A - A0)..........（9）=・KML[L]KML(A ∞ - A)

を用いればいいことが分かる。

A[L]0 = A0[L] + A ∞[ML] ..........（4）9News No.99(2001)

Q＆A
新規タンパク質定量キット-Proteostain-

Protein Quantification Kit- Rapid-Proteostain-

Protein Quantification Kit- Wide Range
Q1
A1

それぞれのキットの測定原理を教えて下さい。
Rapid は Bradford 法を採用しています。Coomassie Brilliant
Blue G (Fig.1)をタンパク質検出用試薬として用いており、高感度で反応が速いという特長を持っています。

Fig.1 Coomassie Brilliant Blue G

Fig.3 WST-8 とその formazan dye の構造式

Fig.4 WST-8 の吸収スペクトルa) タンパク質無しb) タンパク質(BSA):200 µg/ml

Coomassie Brilliant Blue G はタンパク質に作用し、酸性条件で青色に呈色します（λ =595 nm 付近）(Fig.2)。しかも呈色反応は 1 分以内に終了し、生じた色素は 30 分以上安定です。この方法を使うことにより数分程度でタンパク質定量を行うことができます。

Q2
A2

定量できるタンパク質の濃度範囲はどのくらいですか？
BSA換算でRapidはStandard 法で10 µg/ml 〜 2,000 µg/ml、Micro法で0.1 µg/ml 〜 50 µg/mlです。Wide Rangeは50 µg/
ml 〜 5,000 µg/ml です。

Q3

キット以外に必要な器具として何を準備すればいいのですか？
マイクロプレートリーダー、96 穴マイクロプレート、20 µl,
200 µl マイクロピペッター（可変式）、1.5 ml 遠心チューブになります。マイクロプレートリーダーは、Rapidの場合600nm のフィルターが、Wide Range の場合 650 nm のフィル
ターが必要になります。

A3

Fig.2 Coomassie Brilliant Blue G の吸収スペクトルa) タンパク質無しb) タンパク質(BSA):500 µg/ml

一方Wide Rangeはtetrazolium salt であるWST-8を用いた方法になります。塩基性条件でWST-8はタンパク質により容易に還元され、青色の formazan dye を生成します。

10

Q4 保存はどのようにすればいいでしょうか？
A4 Rapidの場合、冷蔵（0〜5℃）で保存して下さい。CBB solution
は 0 〜 5℃で 12ヶ月、室温では 6ヶ月安定です。0 〜 5℃の保存においてバックグラウンドの上昇はありません。
Wide Range の場合、冷蔵（0 〜 5℃）の遮光条件で保存して下さい。WST-8 solution は 0 〜 5℃で 12ヶ月、室温で 3ヶ月安定です。また Buffer solution は室温で 18ヶ月安定です。しかし、炭酸ガスを吸収して pH が下がる恐れがあるので、使用後はしっかりとキャップを締めて下さい。BSA solutionは
0 〜 5℃で 12ヶ月安定です。

News No.99(2001)

Q＆A
新規タンパク質定量キット
Q5
A5

タンパク種による感度の差はどの程度ですか？
下記 Table 1 をご参照ください。正確な値を得るためには同じタンパク種を用いて検量線を作成して下さい。

Q8
A8

吸光光度計を用いて測定することもできますか？
Rapid、Wide Rangeそれぞれマイクロプレートを使わず、吸光光度計を用いてセル法で測定することが可能です。
Rapidの場合、500 回用で最大 80 サンプル、2,500 回用で 400 回測定できます。また、Wide Range の場合は 500 回用で最大 40 サ
ンプル、2,500 回用で 200 サンプル測定可能です。セル法での測定方法は、取扱説明書を参照して下さい。

Q9

サンプル中の界面活性剤濃度が、許容範囲よりも高い場合、どうしたらよいですか。
Table 2 に記載のそれぞれの界面活性剤について、濃度が許容範囲以下になるようサンプルを希釈するか、市販の界面活性剤除去キットを使用して除去してください。

A9

Q6
A6

Q7
A7

濃いタンパク質の濃度を測定する場合に注意する点を教えて下さい。
Rapidの場合、BSA 換算で2,000 µg/mlまでは測定できます。
それ以上になるとCBB solutionとの混合時に沈殿を起こす事があります。その場合には予めサンプルを希釈して用いて下さい。Wide Range は 5,000 µg/ml まで測定可能なので、濃いタンパク質濃度を測定する場合には、Wide Range がお勧めです。
測定に阻害を与える物質とその濃度について教えて下さい。
下記 Table 2 をご参照ください。阻害物質が高濃度に含まれる場合は用いる前に除去操作を施して下さい。

Q10 このアッセイで得られたタンパク量はBSA換算値ですが、真のタンパク量を知るにはどうしたらよいでしょうか。
A10 BSA の代わりに、目的のタンパクを用いて検量線を作成し、その検量線からタンパク量を求めてください。
品名

容量

価格
（￥）

メーカーコード-Proteostain- Protein Quantification Kit - Rapid

500 tests
4,000
2,500 tests
11,000-Proteostain- Protein Quantification Kit - Wide Range
500 tests
4,000
2,500 tests
11,000

PQ01
PQ01
PQ02
PQ02

Table 2 測定に影響を及ぼさない阻害物質の最大濃度 *＊無添加の BSA による検量線との誤差が 5% 以内の濃度を示す。
＊両キットとも、Urea 50％含有まで影響はない。

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News No.99(2001)

新製品
遅放出型 NO ドナー

NOR 5す。動物実験での経口投与においては、NOR 3 と同様 0.5% メチ
ルセルロースに懸濁して投与することが可能です。
参考文献
1) M. Kato, S. Nishino, M. Ohno, S. Fukuyama, Y. Kita, Y. Hirasawa, I. Nakanishi,
H. Takasugi, K. Sakane, Bioorg. Med. Chem. Lett., 6, 33 (1996).
2) Y. Kita, Y. Hirasawa, S. Fukuyama, K. Ohkubo, Y. Kato, H. Takamatsu, M.
Ohno, S. Nishino, M. Kato, J. Seki, J. Pharmacol. Exp. Ther., 276, 421 (1996).
3) Y. Kita, Y. Hirasawa, Y. Kato, K. Ohkubo, M. Ohno, S. Nishino, M. Kato, S.
Fukuyama, J. Cardiovasc. Pharmacol., 30, 223 (1997).
4) Y. Hirasawa, Y. Kato, S. Fukuyama, M. Ohno, S. Nishino, M. Kato, Y. Kita,

Thrombosis & Haemostasis, 79, 620 (1998).

＜特長＞●半減期が長い（20 時間 , 37℃, pH7.4）●血圧降下作用がない●動物への経口投与が可能である
NOR 5は NO 放出剤である NOR シリーズの中で最も遅い NO 放出
速度を持つドナーです。
Carboxy-PTIO を用いて NO 放出を観察した場合、各 NOR 化合物の NO 放出の半減期は pH 8.0、30℃で、NOR 1 が 2.6 min、NOR
3(FK409)が 46 min、NOR 4 が 107 min であるのに比べて NOR 5
は 1800 min と非常に長いことが報告されています 1)。
NOR 3 と NOR 5 を 10 mg/kg でラットに経口投与した場合、血漿NOx 量は NOR 3 では 120 分で最大に達するのに対し、NOR 5 は360分まで時間依存的に増大し、ゆっくりとNO放出が起こっていることが示されています 2 ) 。しかしながら尿中に排出される総NO2-/NO3- 量は、分子量の違いで NOR 3 の方がモル濃度では幾分高くなるため若干高くなりますが、両者に顕著な差はなく NOR 5から放出された NO も NOx として排出されています。また、このラットへの経口投与（10 mg/kg）では、NOR 3 は血圧降下作用を示しましたが、NOR 5 は 240 分後も血圧の低下は見られないとされています 2,3)。血栓形成抑制作用については、NOR 5 は 10 mg/kg
で 37% 抑制すると報告されており、NOR 3 が 1.0 mg/kg の経口投与で 35% 抑制するのに比べると穏やかな効果を示しますが、代表的な硝酸薬の一つである ISDN（硝酸イソソルビド）が 32 mg/kg
でわずか17%しか抑制しないのと比較すると、NOR 5も有効な薬物であると考えられます 4)。
NOR 5 は他の NOR 類と同様に、DMSO に溶解した PBS などの緩衝液中に添加した時点から、NO 放出が始まります。pH 7.4、37℃
において、0.5 mmol/l の NOR 5 から放出される NO を、上記と同様にCarboxy-PTIOを用いてESRで測定した場合の半減期は20時間です。このように NOR 5 は NOR 3 などと同様に大量の NO を、非常にゆっくりと放出させることができます。その上、急激な血圧降下作用を示さないので、eNOSから発生するNOのような長時間にわたる NO の作用を検討する場合に適していると考えられま

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品名
NOR 5

容量
10mg
50mg

価格（￥）
コード メーカーコード
8,500
348-08011
N448
32,500344-08013
N448

お知らせ

第 12 回フォーラム・イン・ドージン
開催ご案内
以下の要項で開催を予定しております。
詳細は次号にてご案内いたします。

テーマ：「生物毒から生命現象を垣間見る」
オーガナイザー：森田隆司（明治薬科大学生体分子学教授）
中山 仁（熊本大学薬学部生体機能化学教授）
代 表 世 話 人 ：前田 浩（熊本大学医学部微生物学教授）
当 番 世 話 人 ：中山 仁、森田隆司、山本哲郎（熊本大学大学院分子病理学教授）演者：正木春彦（東京大学大学院分子育種学教授）
梅田真郷（東京都臨床医学総合研究所）
遠藤彌重太（愛媛大学工学部応用化学科教授）
堀口安彦（大阪大学微生物病研究所細菌毒素学教授）
川合述史（沼南リハビリテーション病院、自治医大名誉教授）
佐藤一紀（福岡女子大学人間環境学部教授）
森田隆司（明治薬科大学生体分子学教授）
鎮西康雄（三重大学医学部医動物学教授）（敬称略）
日 時：平成 13 年 11 月 30 日(金) 9:10 〜 16:45
開 場：8:45
開演：9:10
会 場：メルパルク熊本（熊本市水道町 15-11）
参加費：無料
お問い合わせ・お申し込み先：フォーラム・イン・ドージン事務局 （担当：斉藤 、満田）TEL：0120-489548 FAX：0120-021557
e-mail：motoko@dojindo.co.jp または mitsuda@dojindo.co.jp

News No.99(2001)

新製品

近日発売予定膜電位性感受性色素

膜タンパク質結晶解析用界面活性剤

n-Dodecyl-β-D-maltoside

DiBAC4(3)〈特長〉● Ar レーザー(488 nm)を励起光源として利用可能である。
● 膜電位変化に対し、高感度な蛍光変化を示す。
● 蛍光特性(20 mmol/l HEPES,pH 7.0)：λex=495 nm, λem=517 nm

化学名：n-Dodecyl-β-D-maltopyranoside
CMC 値: 0.17 mmol/l

OH

OH

O

O

O(CH2)11CH3

OH

OH
O

OH

OH

OH
C24H46O11=510.62

n-Decyl-β-D-maltoside
DiBAC4(3)で染色した細胞の蛍光顕微鏡画像
SH-SY5Y(Human Neuroblastoma Cell)に 1 mmol/l DiBAC4(3) [Hanks-HEPES]

化学名：n-Decyl-β-D-maltopyranoside
CMC 値: 1.8 mmol/lを加え無刺激で 10 分後に観察した。（B 励起）

DiBAC4(3)を用いた膜電位測定例
1 細胞洗浄マイクロプレート中で培養した細胞を、5 µmol/lのDiBAC4(3)を含むアッセイ用緩衝液 200 µl で 2 回洗浄する。
アッセイ用緩衝液の組成は以下の通りである。
20 mmol/l HEPES, 120 mmol/l NaCl, 2 mmol/l KCl,
2 mmol/l CaCl2, 1 mmol/l MgCl2, 5 mmol/l グルコース , pH 7.4
2 色素のロード
上記、DiBAC4(3)を含むアッセイ用緩衝液 180 µl 中で、5％CO2
存在下、37℃で 30 分インキュべートする。
3 測定
刺激による蛍光強度変化を蛍光プレートリーダーで測定する。
DiBAC4(3)の蛍光は温度により変化するため、一定温度(37℃)
で測定する。DiBAC4(3)を含むアッセイ用緩衝液に溶解した薬剤を 20 µl 加え、蛍光変化を測定する。

OH

OH

O

O

O(CH2)9CH3

OH

OH
O

OH

OH

OH
C22H42O11=482.57

n-Octyl-β-D-maltoside
化学名：n-Octyl-β-D-maltopyranoside
CMC 値: 23.4 mmol/l

OH

OH

O

O

O(CH2)7CH3

OH

OH
O

OH

OH

OH
C20H38O11=454.51

SH-SY5Y 細胞(50,000 cells/well)を 1 µmol/l DiBAC4(3)で染色し、脱分極刺激(50 mmol/l KCl)した際の蛍光強度変化
装置：FDSS6000(浜松ホトニクス株式会社)

品名
DiBAC4(3)

容量
25mg

価格（￥）
27,000

メーカーコード
D545

品名
容量
価格（￥）
コード メーカーコード
n-Dodecyl-β-D-maltoside
1g
10,800341-06161
D316
5g
42,500347-06163
D316

n-Decyl-β-D-maltoside(D382), n-Octyl-β-D-maltoside (O393)についてはお問い合わせください。

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News No.99(2001)

キットケース変更ご案内
今年 4 月より同仁化学研究所および DOJINDO MOLECULAR TECHNOLOGIES, INC 開発のキット類の仕様を変更しました。同仁化学研究所のカラーであるブルーを基調にした新しいデザインを採用し、研究者の方々に使いやすいように工夫を凝らしました。
従来のケースから徐々に新しいケースに変更していきます。DOJINDO のキットをご愛顧くださいますようお願い申し上げます。

ケース

ラベル

中仕切

・従来ケースよりも強い材質にし、中の試薬を取り出しやすい形態に改良しました。
・紙で出来ておりますので、使用後は焼却可能です。

・冷蔵庫の中に入れたままでも、机の上に置いたときでも見やすいように、前からでも上からでも品名が確認できます。
・ラベルでシーリングしております。お使いになる際には、カッターで開封してください。

・ホールド性の高いスポンジを採用しました。
・スポンジは焼却可能な素材を使用しています。
（廃棄にあたりましては、各地
方自治体の指示に従ってください。）

新しいケースへの切替え対象製品-Proteostain- Protein Quantification Kit - Rapid (500 tests)-Proteostain- Protein Quantification Kit - Wide Range (500 tests)

Biotinylation Kit (Sulfo-OSu)
Biotinylation Kit (Sulfo-OSu, Designed for use with BIACORE○R instrument systems)
SOD Assay Kit – WSTCell Counting Kit（500 回用、2500 回用）
Cell Counting Kit-8（500 回用、2500 回用）

ホームページアドレス
URL : http:// www. dojindo.co.jp/
E-mail : info@dojindo.co.jp

NO2 / NO3 Assay Kit-F(Fluorometric) 〜 2,3-Diaminonaphthalene Kit 〜
NO2 / NO3 Assay Kit-C(Colorimetric) 〜 Griess Reagent Kit 〜
NO2 / NO3 Assay Kit-F II(Fluorometric) 〜2,3-Diaminonaphthalene Kit〜
NO2 / NO3 Assay Kit-C II(Colorimetric) 〜 Griess Reagent Kit 〜-Nucleostain- DNA Damage Quantification Kit -AP Site CountingTotal Glutathione Quantification Kit
Nitrosothiol Assay Kit

フリーファックス
フリーダイヤル

0120-021557
0120-489548

ドージンニュース No.99 平成13年7月9日発行

News No.99
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株式会社同仁化学研究所

DOJINDO LABORATORIES

熊本県上益城郡益城町田原2025-5 〒861-2202
発行責任者 石田和彦 編集責任者 斉藤素子 年４回発行 許可なくコピーを禁ず