Glycative Stress Research
Online edition : ISSN 2188-3610
Print edition : ISSN 2188-3602
Received : July 6, 2021
Accepted : August 25, 2021
Published online : September 30, 2021
doi:10.24659/gsr.8.3_148

Original article

Screening plant extracts for inhibition of hair glycation
Yasunori Okuma 1), Jiro Tanaka 1), Akimasa Mochizuki 1),
Masayuki Yagi 2), Yoshikazu Yonei 2)
1) Research Center, Arimino Co., Ltd, Saitama, Japan2) Anti-Aging Medical Research Center and Glycative Stress Research Center,
Graduate School of Life and Medical Sciences, Doshisha University, Kyoto, Japan
Glycative Stress Research 2021; 8 (3): 148-155(c) Society for Glycative Stress Research（原著論文：日本語翻訳版）

毛髪における抗糖化作用を有する植物抽出液の探索
大熊康範 1) 、田中二郎 1) 、望月章雅 1) 、八木雅之 2) 、米井嘉一 2)
1) 株式会社アリミノ 研究開発部 総合研究所
2) 同志社大学大学院生命医科学研究科アンチエイジングリサーチセンター・糖化ストレス研究センター

抄録［目的］毛髪は根元から毛先にかけて、経時的に糖化し破断強度の低下といった物性変化を示す事が 報告されている。一方で、毛髪における糖化を抑制する研究は数少ない。そこで、本研究では糖化による毛髪の物性変化を抑制する素材の探索を目的に、化粧品原料として使用可能な植物抽出液の抗糖化作用を検証した。。

［方法］試料は既に化粧品原料として使用されている植物抽出物 26 種を使用した。抗糖化作用は、羊毛由来

ケラチン 5.0 mg/mL 、グルコース 1.2 mol/L 、各試料を含む 0.1 mol / L リン酸緩衝液（ pH 7.4 ）を 60 ℃ で 10日間反応させた後、反応液中に生成した AGEs 量を蛍光法（励起波長 370 nm / 検出波長 440 nm ）で測定し、AGEs 生成抑制率を算出した。

一次スクリーニングは、各試料を殺菌イオン交換水にて反応液中の終濃度が 0.1 mg/mL になるよう調整

し、AGEs 生成抑制率の測定を行った。二次スクリーニングは、一次スクリーニングで得た AGEs 生成抑制率
75 % 以上の試料について、50 % 生成抑制濃度（IC 50）を算出し、評価を行った。次に、美容処理履歴のない
30 歳代健康女性に対して、書面にて毛 髪 サンプル 提供の同意を得て、抗糖化作用の検証を行った。抗糖化作用の検証は、毛髪サンプルをグルコース 1.2 mol/L 、各試料 0.1 mg/mL を添加した 0.1 mol/L リン酸緩衝液（ pH 7.4 ）に浸漬し、 50 ℃ で 10 日間反応させた後、毛髪蛋白質を抽出し、蛍光性 AGEs 量を測定した。毛髪の物性値は引張り試験機を用いて、室温 25 ℃ 湿度 65 % RH にて破断強度の測定を行った。

連絡先： 大熊康範
株式会社アリミノ 研究開発部 総合研究所〒355-0812 埼玉県比企郡滑川町大字都 25-5
TEL：0 493- 57-0621 FAX：0493 -57-0623 e -mail：y-ohkuma@arimino.co.jp
共著者：田中二郎 j -tanaka@arimino.co.jp; 望月章雅 a-mochizuki@arimino.co.jp;
八木 雅之 myagi@mail.doshisha.ac.jp ; 米井嘉一 yyonei@mail.doshisha.ac.jp（ 1 ）Glycative Stress Research 2021; 8 (3): 148-155
本論文を引用する際はこちらを引用してください。
(c) Society for Glycative Stress ResearchGlycative Stress Research［結果］一次スクリーニングの結果、26 種中 9 種の試料に 75 % 以上の AGEs 生成抑制作用が認められた。二次スクリーニングの結果、ルイボスエキスの IC 50 はアミノグアニジンと比べて 20 倍以上の強い抗糖化作用を有した。毛髪を用いた試験では、ルイボスエキスが蛍光性 AGEs の生成を抑制した（生成抑制率 82.4 %）。

また、糖化処理を施した毛髪の破断強度は、未糖化処理毛髪と比較し 20.8 % 低下したが、ルイボスエキスを添加することにより、糖化による破断強度低下を 4.9 % に抑制できた。

［結論］ルイボスエキスには、毛髪の蛋白質の蛍光性 AGEs 産生抑制作用が認められた。また、糖化による毛髪の破断強度の低下に対しても抑制作用を示した。これらの結果より、ルイボスエキスを頭髪化粧品に添加することで、毛髪の糖化による物性変化を抑制できる可能性が示された。

KEY WORDS : 毛髪、植物抽出物、ルイボス、糖化、糖化最終生成物（ advanced glycation end
products: AGEs）

		

はじめに
グルコースなどの還元糖と蛋白との非酵素的反応は糖化と呼ばれる。糖化は生体内でも起こり、糖化により組織中に糖化最終生成物（advanced glycation end products:

AGEs）が生成し蓄積する。生体内での AGEs の蓄積は物

AGEs 抗体（clone 6 D12）は株式会社トランスジェニック（福岡）より購入した。Alexa54 6 標識二次抗体は Thermo
Fisher Scientific（Waltham, MA, U.S. A.）より購入した。
Can Get Signal immunostain Solution は東洋紡株式会社

理的、生理的、見た目のダメージを引き起こすとされてい（大阪）より購 入した。その他の試薬は特級及び生化学用

1)

2)

3)

4)

る 。糖化は、循環器疾患 、骨粗鬆症 、認知症 などのものを富士フイルム和光純薬株式会社（大阪）から購入の進展要因となり、老化危険因子の一つとされている。

して使用した。

ラーゲン 6) やエラスチン 7) 等の蛋白に蓄積する事が報告(2) 試料の調製

失し 8)、真皮に形成された AGEs は皮膚の黄変を引き起こを試料として用いた（Table 1）。糖化反応阻害作用の陽性

皮膚においても、AGEs は表皮のケラチン 、真皮のコ5)されている。角層 AGEs 蓄積量が多い皮膚は肌のキメが 喪し 9) 、また皮膚のハリ、弾力低下の原因になると考えられている。このように皮膚の糖化は見た目の老化に関与している事から、近年、糖化を抑制する「抗糖化」が エイジン
グケアの 一 つの重要な要素として注目を浴びている。
毛髪も皮膚同様に見た目の若々しさを保つための重要な要素の一つである。近年、毛髪においても、根元から毛先にかけて経時的に糖化し、破断強度の低 下といった物

性変化を示す事が報告されている10)。毛髪の破断強度が低下すると、切れ毛や枝毛といった髪質の低下につながり、
見た目の老化を促進させる。しかし、毛髪における糖化を抑制する研究は、これまでのところほとんどない。
そこで、本研究では糖化による毛髪の物性変化を抑制する素材の探索を目的に、植物抽出液の抗糖化作用を検
証した。

方法

化粧品原料として販売されている 26 種類の植物抽出物

対照としては糖化反応阻害剤の一種であるアミノグアニ
ジン（AG）を使用した。

( 3 ) 糖化反応抑制作用の検証
糖化反応抑制作用のスクリーニングにはケラチン - グルコース（Ker- Glucose）糖化反応モデルを使用した 11)。糖（pH 7.4）、5.0
化反応液は、0.1 mol/L リン酸緩衝液（ PB）
mol/L グルコース、5.0 mg/mL ケラチンを調製した後、それぞれ試料を添加した。その後、糖化反応液を 60 ℃ で 10日間反応させた後、マイクロプレートリーダーで AGEs 由
来蛍光（励起波長 370 nm ／ 検出波長 440 nm ）を測定した。対照（reference: ref ）は、試料の代わりに等量の精製水を加え、同条件で反応させた。蛍光性 AGEs 生成抑制
作用の陽性対照には AG 1.0 mg/mL を試料と同量加えたものを使用した。蛍光値は 5.0 µg/mL 硫酸キニーネの蛍
光 値を 1,000としたときの相対値として算出した。蛍光性
AGEs 生成抑制率は以下の式に基づいて算出した。

(1) 試薬糖 化 反 応 の モ デ ル 蛋 白 は、 羊 毛 由 来 ケ ラ チ ン を ナ カ
ライテスク株式会社（京都）から購入して使用した。抗（ 2 ）蛍光性 AGEs 生成抑制率 (%)= 100 – { (sample Glucose (+) – sample Glucose (–)) /(ref Glucose (+) – ref Glucose (–)) x 100}

Alcohol
Water
Alcohol

Ryoku-cha
Kou-cha

Sasa Veitchii

Aspalathus Linearis

Oenothera biennis

Gynostemma pentaphyllum

Cymbopogon citratus

Artemisia Princeps

Equisetum Arvense

Coix Lacryma-Jobi

Crataegus cuneata

Rosa canina

Matricaria recutita

Aloe Arborescens

Carthamus Tinctorius

Angelica keiskei

Zingiber Officinale

Arctium lappa

Panax Ginseng

Dokudami (Water)

Kuma bamboo grass

Rooibos

Evening primrose

Jiaogulan

Lemon grass

MugwortField Horsetail

hatomugi

Loquat (BG)

Loquat (Alcohol)

Japanese hawthorn

Rose hip

Chamomile

Aloe

Safflower

Ashitaba

GingerEdible burdock

Asian Ginseng

Green tea

Black tea

Oolong tea

Aminoguanidine

4

5

6

7

8

9

10

11

12

13

14

15

16

17

18

19

20

21

22

23

24

25

（ 3 ）

26

Ref

–

Camellia Sinensis

Eriobotrya Japonica

Houttuynia Cordata

Dokudami (Alcohol)–

Theaceae

Araliaceae

Asteraceae

Zingiberaceae

Apiaceae

Asteraceae

Asphodelaceae

Asteraceae

Rosaceae

Rosaceae

Rosaceae

Poaceae

Equisetaceae

Asteraceae

Poaceae

Cucurbitaceae

Onagraceae

Fabaceae

Poaceae

Saururaceae–

Oolong-cha

Otane ninjin

Gobou

ShougaAshitaba

Benibana

Aloe

Kamiture

Rose Hip

Sanzasi

Biwa

Hatomugi

SuginaYomogiLemon grass

Amatyaduru

Mematuyoigusa

Rooibos

Kuma-zasa

Dokudami–

Camellia Sinensis Leaf Extract

Panax Ginseng Root Extract

Arctium Lappa Root Extract

Zingiber Officinale（Ginger）Rhizome Extract

Angelica Keiskei Leaf/Stem Extract

Carthamus Tinctorius (Safflower) Flower Extract

Aloe Arborescens Leaf Extract

Chamomilla Recutita (Matricaria) Flower Extract

Rosa Canina Fruit Extract

Crataegus Oxyacantha Fruit Extract

Eriobotrya Japonica Leaf Extract

Coix Lacryma-Jobi Ma-yuen Seed Extract

Equisetum Arvense Extract

Artemisia Princeps Leaf Extract

Cymbopogon Schoenanthus Leaf/Stem Extract

Gynostemma Pentaphyllum Leaf Extract

Oenothera Biennis (Evening Primrose) Seed Extract

Aspalathus Linearis Leaf Extract

Sasa Veitchii Leaf Extract

Houttuynia Cordata Extract–

Alcohol

Alcohol

Alcohol

Alcohol

Alcohol

Alcohol

Butylene Glycol

Alcohol

Butylene Glycol

Alcohol

Alcohol

Alcohol

Alcohol

Butylene Glycol

Butylene Glycol

Alcohol

Alcohol

Butylene Glycol

Water

Water

Butylene Glycol

Water

3

Rubus Suavissimus (Raspberry) Leaf Extract

Butylene Glycol

Ten-cha

Dokudami (BG)

Rosaceae2

Extractants

Rubus Suavissimus

I NCI

Chinese blackberry

Japanese name1

Family Name

Scientific Name

Sample NameID

Table 1. Sample profile.

毛髪における抗糖化作用を有する植物抽出液の探索

Glycative Stress Research(4) 一次スクリーニング

各試料を終濃度 0.1 mg/mL となるように精製水で調整をした。上記の試験法にて蛍光性 AGEs 生成抑制率を算出した。

(5) 二次スクリーニング

糖化処理を行った毛 髪をミクロトーム（ REM-710 ヤマ

ト科学株式会社、東京）を用いて厚さ 5 μm に切断し、切片をスライドガラス 上に固定した。一次抗体を Can Get
Signal immmunostai Solution A に 1/ 200 で希釈し、毛 髪と 4 ℃ にて一晩反応させた。その後、二次抗体を一次抗体と同様に希釈し、毛髪と室温にて一時間反応させた。

二次スクリーニングは、一次スクリーニングで得た蛍光性 AGEs 生成抑制率 75 % 以上の試料について、50 % 生成を算出し評価を行った。IC 50 の算出は、各抑制濃度（ IC 50）
試料を終濃度で 3 濃度（0.1 mg/mL、0.01 mg/mL、0.001

mg/mL ）となるように調整し、各濃度における蛍光性 AGEs

PB にて洗浄後、蛍光顕微鏡（ BZ-X810 株式会社キーエ

ンス、大阪）を用いて観察を行った。露光時間は未糖化処
理毛において自家蛍光が検出されない時間を設定した。

形成の阻害率を測定し、算出を行った。

結果(6) 毛髪の糖化処理(1) 一 次スクリーニング結果

毛髪は美容処理履歴（ブリーチ、ヘアカラー、パーマネ

ントウェーブ、縮毛矯正）のない 30 歳代健康女性に対して、
書面にてサンプル提供の同意を得て、採取した。

毛髪をグルコース1.2 mol/L 、および各試料を 0.1 mg/mL

を含む 0.1 mol/L PB 中 で 50 ℃ 、10 日間反応させる事により、in vitro で糖化させた。対照（reference: ref ）は、試

各試料の蛍光性 AGEs 生成抑制率を Fig. 1 に示した。26

種類すべての試料は蛍光性 AGEs の生成を抑制した。 また、26 種 中 9 種の試料に 75 % 以上の蛍光性 AGEs 生成抑制作用が見られた。

(2) 二次スクリーニング結果

IC 50 の結果をFig. 2 に示した。ルイボスエキス（Rooibos）

料の代わりに等量の精製水を加え、同条件で反応させた。

に最も高い抗糖化作用が見られ、次いで緑茶エキス( 7) 毛髪中 AGEs 測定
各毛 髪サンプルを脱脂剤（クロロホルム / メタノール[MeOH] = 2/1）に室温で 16 時間浸漬した。脱脂剤から毛髪を回収し、室温で 1 時間以上乾燥させた後、5 mm 以下の長さに切断した。各毛髪サンプル 10 mg を、5 M 尿素、
2.6 M チオ尿素、および 25 mmol/L Tris-HCL バッファー、
5 % 3 -メルカプト-1, 2 - プロパ ンジ オール で 構 成される
500 μL の抽出バッファー（pH 8.5）に浸漬した。その後、
攪 拌しながら 50 ℃ で 1 日間反応させ た。
次に、サンプルを 10,000 rpm で 1 分間、20 ℃ で遠心分離し、得られた上清を蛋白質溶液として回収した。蛋白質溶液の蛍光性 AGEs は、既出の方法 (3) と同様に蛍光法にて測定した。蛋白質濃度はブラッド フォード 法

12)

にて

測定した。蛍光性 AGEs 含有量は、蛋白質含有量 1 mg あたりで計算した。グルコース添加群と未添加群の差を蛋
白当たりの AGEs 変化量とし評価を行った。

、カミツレエキス（Chamomile）に高い抗 糖化（Green tea）作用が見られ た。特に、ルイボスエキスは緑茶エキスと比 較して 2 倍、また AG と比 較し 20 倍以上と高い抗 糖化作用を示した。 IC 50 の結果のうち、上位のルイボスエキ、下位のス、中位のテンチャエキス（Chinese blackberry）
コウチャエキス（Black tea）を毛髪に対する抗糖化作用の検 証に供した。

(3) 毛髪に対する抗糖化作用

毛髪に対する抗糖化作用の検証結果を Fig. 3 に示した。

糖化処理日数が増えるに従って、毛髪中のAGEs の蓄積量は増加した。ルイボスエキスが最も強く蛍光性 AGEs の生成を抑制した（生成抑制率 82.4 %）。また、テンチャエキ

スやコウチャエキスも AG と比較し、高い生成抑制作用を示し、その効果の強弱は IC 50 の値と同様の傾向を示した。

(4) 破断強度測定(8) 毛髪の破断強度測定

毛髪の物性値は引張り試験機（KES-G1-SH 毛髪一本

引 張り試験機、カトーテック株式会社、京都）を用いて、室温 25 ℃ 、湿度 65 % RH にて破断荷重の測定を行った。
毛髪断面積を毛髪直径測定器（SK2000 カトーテック株式会社）にて測定し、毛髪の破断強度を以下の式に基づいて算出した。

糖化処理を施した毛髪の破断強度は、未糖化処理毛髪と比較し 20.8 % 低下した。一方で、ルイボスエキスを添加することにより、糖化による破断強度低下を 4.9 % に抑制できた。

(5 ) 蛍光観察

糖化処理により毛髪内に AGEs が蓄積する様子が蛍光にて観察できた。特に毛髪内の蛍光性 AGEs の蓄積は表面

破断強度 ＝ 破断荷重 ／毛髪断面積のキューティクルに留まらず、内部のメデュラやコルテッ(9) 免疫蛍光染色

免疫蛍光染色法は モノクローナル抗体 clone 6D12 を用いた ABC 法にて行った 。
8)

クスにまで進行している様子も観察された。また、ルイ
ボスエキスを添加することにより、毛髪全体で AGEs 生

成が 抑 制された事も確認できた。

（ 4 ）毛髪における抗糖化作用を有する植物抽出液の探索

Inhibition of AGEs (%)
0

20

40

60

80

100

Chamomile (17)108.27

Rooibos (6)101.26

Field horsetail (11)92.43

Mugwort (10)92.31

Green tea (24)86.94

Evening primrose (7)86.09

Oolong tea (26)85.93

Chinese blackberry (1)85.88Black tea (25)

77.63

Ashitaba (20)74.03

Loquat (BG) (13)

72.43

Dokudami (BG) (2)71.96

Lemon grass (9)71.04

Loquat (Alcohol) (14)67.99

Safflower (19)66.80Japanese hawthorn (15)

63.33

Dokudami (Alcohol) (3)60.98

Aloe (18)58.56

Kuma bamboo grass (5)57.53

Dokudami (Water) (4)44.07

Rose hip (16)42.43

Asian Ginseng (23)40.19

Jiaogulan (8)38.69Ginger (21)29.79

Aminoguanidine (Ref)26.39

hatomugi (12)Edible burdock (22)

120

11.20
9.78

Fig. 1. Inhibitory effect of plant extracts on AGEs in the Ker-Glucose reaction model.

The results are expressed as means. 0.1 mg/mL plant extracts were introduced into glycation models containing 5.0 mg/mL
Ker and 1.2 mol/L glucose (n = 3). After 10 days of incubation at 60°C, fluorescent AGEs were measured by excitation at 370
nm and emission at 440 nm. AGEs, advanced glycation end products; Ker, keratin.

IC 50 (mg /mL)
0.0

Rooibos (6)

0.1

0.2

0.3

0.4

0.5

0.6

0.7

0.018

Green tea (24)0.039

Chamomile (17 )0.041

Mugwort (10 )0.044

Chinese blackberry (1)0.045

Oolong tea (26)0.045

Evening primrose (7 )0.048

Field horsetail (11)0.049Black tea (25)0.054

Aminoguanidine (Ref )0.632

Fig. 2. IC 50 of plant extracts on AGEs in the Ker-Glucose reaction model.

The results are expressed as means. 0.1 mg/mL, 0.01 mg/mL, and 0.001 mg/mL plant extracts were introduced into glycation
models containing 5.0 mg/mL Ker and 1.2 mol/L glucose (n = 3). After 10 days of incubation at 60°C, fluorescent AGEs were
measured by excitation at 370 nm and emission at 440 nm. IC50, half maximal inhibitory concentration; AGEs, advanced
glycation end products; Ker, keratin.

（ 5 ）Glycative Stress Research

2.00

Blank (Water)
Rooibos (6)Chinese blackberry (1)Black tea (25)

AGEs per protein(count / mg protein)

1.50

Aminoguanidine (Ref)

1.00

0.50

0.00

0

1

5

10

Incubation period (days)

Fig. 3. AGEs in hair protein.

The results are expressed as means. Hair samples were introduced into PB containing 1.2 mol/L glucose
and 0.1 mg/mL samples. After 10 days of incubation at 50 °C, fluorescent AGEs were measured byexcitation at 370 nm and emission at 440 nm. The degree of AGE content was calculated per 1 mg ofprotein content. AGEs, advanced glycation end products; PB, phosphate buffer.

25.00

Stress (kgf / mm 2 )

20.00

15.00

10.00

5.00

0.00

Gulcose -Gulcose +Rooibos -Fig. 4. Tensile strength of hair.

Gulcose +Rooibos +Results are expressed as mean ± SD. * p < 0.05, Tukey (Kramer test). Hair samples were introduced into
PB containing 1.2 mol/L glucose and 0.1 mg/mL samples. After 10 days of incubation at 50 °C, the tensile
strength was measured using a high-sensitivity hair rheology analyzer at breaking strength, when the hair
was torn off. PB, phosphate buffer; SD, standard deviation.

（ 6 ）毛髪における抗糖化作用を有する植物抽出液の探索

Blank (Water)

Rooiboss 0.1 mg / mL

Fig. 5. Immunofluorescent staining of hair.

Hair samples were introduced into PB containing 1.2 mol/L glucose and 0.1 mg/mL samples.
After 10 days of incubation at 50 °C, AGEs were immunostained with an anti-AGE antibody.
AGEs, advanced glycation end products; PB, phosphate buffer.

考察

二次構造分布の配列に影響を及ぼす事が報告されていケラチン - グルコース糖化反応モデルを使用した
スクリーニング方法る 20)。これらグリオキ サールとグリオキシル 酸は、グル

これまでに 500 種類以上の素材において、BSAや HSA

等の蛋白質に対する抗糖化作用が報告されている

13 -17)。

一方で、蛋白質の種類によりAGEsの産生量に差異 があり、コース同様 にアル デ ヒド 基 を有している。したがって、糖化反応においても上記の様に毛髪内のケラチンタンパ
クの構 造に変化 が 生じている可能性 が 考えられる。
このように糖化が毛髪へ与える影響は、複雑かつ細部

抗糖化の効果はターゲットとなる蛋白質ごとに異なる事の構造にまで及んでおり、その結果として破断強度が低も報告されている 。

下するといった物性変化が起きると推測される。今後、

16)

そこで、本研究ではまず毛髪を構成する蛋白質である
ケラチンを用いてスクリーニングを行った。その後、ス
クリーニングによりケラチンにおける抗糖化作用の確認

詳細なメカニズムは検討する必要がある。

ルイボス抽出物の抗糖化作用
ルイボス（Aspalathus Linearis）は、南アフリカの西ケーされた植物抽出物について、実際に毛髪を用いて抗糖化

プ州の西海岸のごく一部にしか分布しない種である。収作用の検証を行った。
その結果、ルイボスエキスは、ケラチンにおいても実際の毛髪においても蛍光 性 AGEs の生成を強力に抑制し穫した葉を発酵させて作られるルイボスティーは健康飲料として、アフリカ、ヨーロッパをはじめ、日本でも広くた。この結果は、ケラチン - グルコース糖化反応モデルが親しまれている。ルイボスティーは便秘等の消化器疾患の毛髪の抗糖化のスクリーニングに役立つ可能性 があるこ

緩和、ストレス 緩和作用、アレルギー症状の緩和等、のとを示した。

生物学的作用が報告されている21)。栄養素としてはカフェ
インを含まない事に加えて、カリウム、ナトリウム、マ

糖化と毛髪破断強度の関係性について

グネシウム等のミネラルを多く含んでいると言われてい近年、糖化は還元糖のみならず、脂質やアルコールにる。更に、ルイボス特有のアスパラチンをはじめ、ルチン、由来する様々なアルデヒドが原因と考えられている 。こルテオリン、ケルセチンなど、さまざまなポリフェノー蛋白を生成し、身体に様々な障害を引き起こすと考えら

ルテオリンはフラボン類の一種であり、BSAに対する

18)

れらのアルデヒドが 蛋白と反応して AGEs やカルボルニ化れている。
毛髪に関する研究においても、これらアルデヒドの影 響
について、研究 が 行われている。まず、グリオキサールやルが 含まれている 22)。

抗糖化作用が報告されている23)。フラボノールであるケ

ルセチンは、スルフォラファンの AGEs 形成抑制作用を増強する事が報告されている24)。このようにルイボス抽出物

グリオキシル 酸 は 毛 髪のケラチン構造に影響を及ぼし、の糖化反応の阻害は、ポリフェノール類によるものと考

その結果として破断強度を低下させる事 が 報告されてい

えられる。

19)

る 。次に、ヤクの毛にグリオキシル酸処理を施した場合、ルイボスエキスに含まれる様々な成分の中で、毛髪にジスルフィド結合のコンフォメーション変化、セリン残対する抗糖化作用がどの成分に由来するのかは、今後更基の 減 少、イミンの 形 成 と いった、ケラチンタンパ クのなる検 証を必要とする。

（ 7 ）Glycative Stress Research

結語

謝辞

本研究ではルイボスエキスが毛髪の糖化を防ぐための新しい素材であることを見出した。ルイボスエキス配合の毛髪化粧品を使用することで、糖化を防ぎ、美しい髪本 研 究 の 概 略 は 第 17 回 糖 化 ストレス 研 究 会（2019 年
8 月 31 日、京都 ）、IFSCC Mexico Conference 2021（ 2021
年 10 月 18 - 28 日、 web 開催 ）に て 発 表 し た。 本 研 究 の発表にあたり一般財団法人 医食同源生薬研究推進財団を保つことができる事が示唆された。

（ I DF # 21007）より支援を受けた。

利益相反申告本研究を遂行するにあたり株 式 会社 アリミノより支援
を受けた。

参考文献
1) Yagi M, Yonei Y. Glycative stress and anti-aging: 1.

What is glycative stress? Glycative Stress Res. 2016; 3:
152-155.
2) Ward MS, Fortheringham AK, Cooper ME, et al. Targeting
advanced glycation endproducts and mitochondrial
dysfunction in cardiovascular disease. Curr Opin Pharmacol.
2013; 13: 654-661.
3) Yamagishi S. Role of advanced glycation end products(AGEs) in osteoporosis in diabetes. Curr DrugTargets.
2011; 12: 2096-2102.
4) Takeuchi M, Yamagishi S. Possible involvementof advanced glycation end-products (AGEs) in thepathogenesis of Alzheimer’s disease. Curr Pharm Des.
2008; 14: 973-978.
5) Kawabata K, Yoshikawa H, Saruwatari K, et al. The
presence of N(ε)-(carboxymethyl) lysine in the humanepidermis. Biochim Biophys Acta. 2011; 1814: 1246-1252.
6) Dyer DG, Dunn JA, Thorpe SR, et al. Accumulation ofMaillard reaction products in skin collagen in diabetes
and aging. J Clin Invest. 1993; 91: 2463-2469.
7) Mizutani K, Ono T, Ikeda K, et al. Photo-enhanced
modification of human skin elastin in actinic elastosis
by N (epsilon) - (carboxymethyl)lysine, one of theglycoxidation products of the Maillard reaction. J Clin
Invest. 1997; 108: 797-802.
8) 五味貴優 . 角層の AGEs 評価法とその応用. Bio Industry.
2011; 28: 20-26.
9) Ohshima H, Oyobikawa M, Tada A, et al: Melaninand facial skin fluorescence as markers of yellowish
discoloration with aging. Skin Res Technol. 2009; 15: 496502.
10) Shimode A, Yagi M, Naito J, et al. Hair protein glycation
reduces hair breaking strength. Glycative Stress Res.
2014; 1: 37-45.
11) Hori M, Yagi M, Nomoto K, et al. Experimental models
for advanced glycation end product formation using
albumin, collagen, elastin, keratin and proteoglycan. AntiAging Med. 2012; 9: 125-134.
12) Bradford, M.M. Rapid and Sensitive Method for thequantitation of microgram quantities of protein utilizing
the principle of protein-dye binding. Anal Biochem. 1976;
72: 248-254.

13) Hori M, Yagi M, Nomoto K, et al. Inhibition of advanced

glycation end product formation by herbal teas and its
relation to anti-skin aging. Anti-Aging Med. 2012; 9: 135148.
14) Parengkuan L, Yagi M, Matsushima M, et al. Anti-glycation
activity of various fruits. Anti-Aging Med. 2013; 10: 70-76.
15) Ishioka Y, Yagi M, Ogura M, et al. Antiglycation effect ofvarious vegetables: Inhibition of advancedglycation end
product formation in glucose and human serum albumin
reaction system. Glycative Stress Res. 2015; 2: 22-34.
16) Moniruzzaman M, Parengkuan L, Yagi M, et al. Effect ofproteins, sugars and extraction methods on the antiglycation
activity of spices. Glycative Stress Res. 2015; 2: 129-139.
17) Otake K, Yagi M, Takabe W, et al. Effect of tea (Camelliasinensis) and herbs on advanced glycation endproductformation and the influence of post-fermentation.
Glycative Stress Res. 2015; 2: 156-162.
18) 米井嘉一, 八木雅之, 髙部稚子, 他 . 皮膚老化概論：酸化 ストレ
スと糖化 ストレス. 日本化粧品技術者会誌 . 2019; 53: 83-90.
19) Picon F, Albarici V, Terci D, et al. Spectroscopic analysisof microstructure and protein degradation of humanhair caused by new hair straightening systems. IFSCC
Magazine. 2014; 17: 5-8.
20) Boga C, Taddei P, Micheletti G, et al. Formaldehyde
replacement with glyoxylic acid in semipermanent hairstraightening: A new and multidisciplinary investigation.
Int J Cosmet Sci. 2014; 36: 459-470.
21) Une S, Sugimoto I, Akiyama J, et al. Antioxidative activity
and flavonoid composition of the acid precipitates from arooibos tea extract. J Home Econ Jpn. 2010; 61: 717-723.
22) Rabe C, Steenkamp J.A, Joubert E, et al. Phenolic metabolites

from rooibos (Asphalatus linearis). Phytochemistry. 1994; 35;
1559-1565.
23) Wu CH, Yen GC. Inhibitory effect of naturally occurring
flavonoids on the formation of advanced glycation
endproducts. J Agric Food Chem. 2005; 53: 3167-3173.
24) Yamagishi S, Matsui T, Ishibashi Y, et al. Phytochemicals
against advanced glycation end products (AGEs) and thereceptor system. Curr Pharm Des. 2017; 23: 1135-1141.

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