令和五年度

次世代医療機器・再⽣医療等製品
評価指標作成事業
再⽣医療審査 WG 報告書

再⽣医療審査 WG 座⻑

⽇野病院組合

⽇野病院

井上 幸次

目次

I.

次世代医療機器・再生医療等製品評価指標作成事業再生医療審査 WG
令和五年度委員名簿

II.

令和五年度 WG 会議議事概要

III. ヒト（同種）iPS 細胞由来角膜上皮細胞シートに関する評価指標（案）
IV.

調査事項

1. 角膜上皮・内皮の再生医療

V.

稲富

勉

参考資料

1. 平成 22 年 1 月 18 日付薬食機発 0118 第 1 号厚生労働省医薬食品局審査管理課医療機器審査管理室長通知
別添 4 「角膜上皮細胞シートに関する評価指標」
2. 平成 24 年 9 月 7 日付薬食発 0907 第 5 号厚生労働省医薬食品局長通知「ヒト（同種）iPS（様）細胞加工医薬品等の品質及び安全性の確保に関する指針」
3. 令和元年 6 月 27 日付薬生機審発 0627 第 1 号厚生労働省医薬・生活衛生局医療機器審査管理課長通知「ヒト細胞加工製品の未分化多能性幹細胞・形質転換細胞検出試験、造腫瘍性試験及び遺伝的安定性評価に関する留意点」

I. 次世代医療機器・再生医療等製品評価指標作成事業
再生医療審査 WG 令和五年度委員名簿

次世代医療機器・再生医療等製品評価指標作成事業
再生医療審査 WG 令和 5 年度委員名簿

座長

井上 幸次

日野病院組合 日野病院 名誉病院長

ワーキンググループ委員（五十音順）

稲富 勉
梅澤 明弘

国立長寿医療研究センター 感覚器センター センター長
国立成育医療研究センター研究所 所長

堀 裕一
万代 道子

東邦大学医学部 眼科学講座 教授
神戸アイセンター病院 研究センター センター長

タスクフォース委員（五十音順）

大家 義則

大阪大学大学院医学系研究科 脳神経感覚器外科学 講師

金村 米博

大阪医療センター 臨床研究センター センター長

齋藤 潤

京都大学 iPS 細胞研究所 臨床応用研究部門 教授

相馬 剛至

大阪大学大学院医学系研究科 脳神経感覚器外科学 講師

高柳 泰
西田 幸二

大阪大学大学院医学系研究科 幹細胞応用医学研究室 助教
大阪大学大学院医学系研究科 脳神経感覚器外科学 教授 （TF 委員長）

厚生労働省

飯野 彬
田中 孝仁

厚生労働省 医薬・生活衛生局 医療機器審査管理課 革新的製品審査調整官
厚生労働省 医薬・生活衛生局 医療機器審査管理課 医療機器係長

甲斐 晴稀

厚生労働省 医薬・生活衛生局 医療機器審査管理課 係員

独立行政法人医薬品医療機器総合機構

小林 陽子

医薬品医療機器総合機構 再生医療製品等審査部 主任専門員

中川 寛之
小川 将仁

医薬品医療機器総合機構 再生医療製品等審査部 審査専門員
医薬品医療機器総合機構 医療機器調査・基準部 部長

郭 宜
熊谷 康顕

医薬品医療機器総合機構 医療機器調査・基準部 医療機器基準課 課長
医薬品医療機器総合機構 医療機器調査・基準部 医療機器基準課 調査専門員

国立医薬品食品衛生研究所（事務局）

安田 智
澤田 留美

国立医薬品食品衛生研究所 再生・細胞医療製品部 部長
国立医薬品食品衛生研究所 再生・細胞医療製品部 室長

河野 健
草川 森士

国立医薬品食品衛生研究所 再生・細胞医療製品部 室長
国立医薬品食品衛生研究所 再生・細胞医療製品部 主任研究官

オブザーバー

十河 友
泉水 優佑

経済産業省 商務・サービス G ヘルスケア産業課医療・福祉機器産業室 室長補佐
経済産業省 商務・サービス G ヘルスケア産業課医療・福祉機器産業室 係長

山根 史帆里 経済産業省 商務・サービス G ヘルスケア産業課医療・福祉機器産業室 係長
浦 綾夏
経済産業省 商務・サービス G ヘルスケア産業課医療・福祉機器産業室 係員
幸寺 玲奈
芝原 摂也

経済産業省 商務・サービス G 生物化学産業課 課長補佐
経済産業省 商務・サービス G 生物化学産業課 専門職

桜井 智也
森内 将貴

日本医療研究開発機構 医療機器・ヘルスケア事業部 医療機器研究開発課 主幹
日本医療研究開発機構 医療機器・ヘルスケア事業部 医療機器研究開発課 主査

II. 令和五年度 WG 会議議事概要

次世代医療機器・再生医療等製品評価指標作成事業
再生医療審査 WG 令和五年度第一回 TF 委員会議事録（概要）1. 開催日時：2023 年 11 月 13 日（月）16 時 00 分〜18 時 00 分
2. 開催場所：大阪大学医学部 臨床研究棟 4 階 階段横セミナー室
3. 出席者（WG 座長、TF 委員長以下 TF 委員五十音順・敬称略）
委員：井上幸次*（日野病院）、西田幸二（大阪大学）、大家義則（大阪大学）、金村米
博*（大阪医療センター）、齋藤潤*（京都大学）、相馬剛至（大阪大学）、高柳泰（大阪大学）
厚生労働省：田中孝仁*、甲斐晴稀*
医薬品医療機器総合機構：小林陽子*、中川寛之*、郭宜*、熊谷康顕*
事務局（国立医薬品食品衛生研究所）：安田智、澤田留美、河野健、草川森士*

Web 参加

4. 配布資料
1. 令和五年度第一回 TF 委員会議事次第
2. 令和五年度委員関係者名簿
3. 次世代医療機器・再生医療等製品評価指標作成事業について
4. 再生医療審査 WG 令和三年度報告とこれまでの評価指標の内容について
5. ヒト（同種）iPS 細胞由来角膜上皮細胞シートに関する評価指標（案）たたき台
6. 厚生労働省医薬食品局審査管理課医療機器審査管理室長通知：平成 22 年 1 月 18
日付薬食機発 0118 第１号「次世代医療機器評価指標の公表について」
・ 別添 4「角膜上皮細胞シートに関する評価指標」
7. 厚生労働省大臣官房参事官通知：平成 26 年 9 月 12 日付薬食機参発 0912 第 2 号「次世代医療機器・再生医療等製品評価指標の公表について」・ 別紙 1「同種 iPS（様）細胞由来網膜色素上皮細胞に関する評価指標」
8. 厚生労働省医薬・生活衛生局医療機器審査管理課長通知：令和 5 年 3 月 31 日付薬生機審発 0331 第 15 号「次世代医療機器・再生医療等製品評価指標の公表について」
・ 別紙「ヒト（同種）iPS 細胞由来心筋細胞シートを用いた虚血性心筋症の治療に関する評価指標」

9. 厚生労働省医薬食品局長通知：平成 24 年 9 月 7 日付薬食発 0907 第 5 号「ヒト（同種）iPS（様）細胞加工医薬品等の品質及び安全性の確保に関する指針」

5. 議事内容①令和 5 年度の WG 座長及び TF 委員と出席者による自己紹介が行われた。WG 座
長・TF 委員は下記の通り（敬称略）
WG 座長
井上幸次

日野病院組合 日野病院 名誉病院長

TF 委員（五十音順）
大家義則

大阪大学大学院医学系研究科 脳神経感覚器外科学 講師

金村米博

大阪医療センター 臨床研究センター センター長

齋藤潤

京都大学 iPS 細胞研究所 臨床応用研究部門 教授

相馬剛至

大阪大学大学院医学系研究科 脳神経感覚器外科学 講師

高柳泰

大阪大学大学院医学系研究科 幹細胞応用医学研究室 助教

西田幸二

大阪大学大学院医学系研究科 脳神経感覚器外科学 教授（TF 委員長）②次世代医療機器・再生医療等製品評価指標作成事業及び令和 4 年度までの再生医療審査 WG の活動内容、そして今年度の TF 活動計画について、事務局より説明された。
③西田 TF 委員長を中心に、「ヒト（同種）iPS 細胞由来角膜上皮細胞シートに関する評価指標（案）」のたたき台の内容について、井上 WG 座長及び TF 委員にて議論された。主な議論の内容は、以下の通り。
ü「角膜上皮細胞シートに関する評価指標（H22.1.18 薬食機発 0118 第１号別添
4）」（資料 6）の内容を見直しつつ本評価指標をベースとして、同じく眼科分野
でヒト（同種）iPS 細胞由来細胞加工製品に係る「同種 iPS（様）細胞由来網膜色素上皮細胞に関する評価指標（H26.9.12 薬食機参発 0912 第 2 号別紙 1）」（資料7）及び、ヒト（同種）iPS 細胞由来細胞シート製品として最新の評価指標である「ヒト（同種）iPS 細胞由来心筋細胞シートを用いた虚血性心筋症の治療に関する評価指標（R5.3.31 薬生機審発 0331 第 15 号別紙）」（資料 8）を参考にして角膜上皮細胞シートに関する評価指標（案）を作成する。

ü

iPS 細胞（様）→iPS 細胞 とする。

ü「４．用語の定義（3）角膜上皮障害」について、「角膜上皮幹細胞疲弊症」との関連性も含
めて、対象とする疾患を何とするかを再検討する。

ü「５．評価に当たって留意すべき事項（１）原料等」について、2 段落目（また、ICH-Q5A…）は削除する。「ヒト（同種）iPS（様）細胞加工医薬品等の品質及び安全性の確保に関する指針（H24.9.7 薬食発 0907 第 5 号）」（資料 9）内に記述されている内容であるため、本評価指標内での記述は不要と判断。
ü「５．（２）b）細胞のバンク化」について、セル・バンク・システムを構築する場合と構築しない
場合の書き分け等を含めて再検討する。

ü「５．（３）製品の品質管理」について、2 段落目の「摘出」→「回収」とする等を含めて、再検討する。

ü「５．（３）b）力学的適合性の確認」について、本項で示したい内容として、細胞シートの回収可能の確認であるため、「力学的適合性の確認」の表現等について再検討する。

ü「５．（３）e）細胞の純度確認」について、マーカー等の確認も含めて、内容について再検討する。

ü「５．（５）非細胞材料及び最終製品の生体適合性」について、タイトル中の「及び最終製品」の削除の可否も含めて、内容について再検討する。

ü「５．（６）非臨床試験」について、①最終製品の品質管理のための造腫瘍性試験、及び②
最終製品の非臨床安全性及び有効性を評価する試験、における、造腫瘍性と絡めたゲノム評価の必要性等を確認し、本評価指標において妥当であるかを再確認する。
Ø

ゲノム評価については、心筋細胞シートでは言及されているが、角膜においては品質試験として行うのは非現実的であるため、あくまで参考のデータ収集扱いとし、もしも WG にて指摘があれば再検討する。

Ø

非臨床安全性試験における造腫瘍性試験において、角膜の場合は同所性移植による安全性の評価のデータは必要ないか（網膜のシートの場合は、品質管理としての造腫瘍性試験は皮下移植で行うが、安全性薬理試験に関して
は、小動物で可能であれば網膜内投与で安全性の造腫瘍性評価を行うということが指標に書かれているため）との指摘があったが、臨床的に角膜で腫瘍ができるのは非常に稀であり、また皮下は角膜に比べて血管が豊富な組織であるため、皮下で代替できるだろうという考えであると説明され、その旨が文書内に妥当に示されているか確認された。

ü「5. （7）臨床試験（治験）③有効性評価」について、第 2 段落において視力を強調した表現になっている点も含めて再検討する。

ü「5. （7）④安全性評価」について、第 3 段落において免疫抑制剤の投与の有無の場合分け等も含めて再検討する。

ü「6. 参考資料」の表記について確認（発表年等の記述）する。また、評価マーカー等に関する参考資料の追記を検討する。
④議論の内容については、事務局で取り纏め、今後、必要な加筆修正等を行い、令和五年度第一回 WG 会議での検討へと進めていく。
⑤WG 会議日程について
次世代医療機器・再生医療等製品評価指標検討会再生医療審査 WG
令和五年度第一回委員会
日時：令和 5 年 12 月 1 日（金） 16～18 時
場所：オフィス東京 C5 会議室

次世代医療機器・再生医療等製品評価指標作成事業
再生医療審査 WG 令和 5 年度第 1 回議事録（概要）1. 開催日時：2023 年 12 月 1 日（金）16 時 00 分〜18 時 00 分
2. 開催場所：オフィス東京 C5 会議室
3. 出席者（WG 座長以下委員五十音順・敬称略）
委員：井上幸次（日野病院）、稲富 勉（長寿医療研究センター）、梅澤明弘（成育医療研究センター研究所）、堀 裕一（東邦大学）、万代道子*（神戸アイセンター病院）、西田幸二*（大阪大学；TF 委員長）
厚生労働省：田中孝仁、甲斐晴稀
医薬品医療機器総合機構：小林陽子、中川寛之、郭 宜*
事務局（国立医薬品食品衛生研究所）：安田 智、澤田留美、河野 健、草川森士
オブザーバー：十河 友（経産省）、山根史帆里（経産省）、幸寺玲奈（経産省）、芝原摂也（経産省）、桜井智也（AMED）、森内将貴（AMED）*

Web 参加

4. 配布資料
1. 令和五年度第一回委員会議事次第
2. 令和五年度委員関係者名簿
3. 次世代医療機器・再生医療等製品評価指標作成事業について
4. 再生医療審査 WG 令和三年度報告とこれまでの評価指標の内容について
5. ヒト（同種）iPS 細胞由来角膜上皮細胞シートに関する評価指標（案）TF 作成
6. 厚生労働省医薬食品局審査管理課医療機器審査管理室長通知：平成 22 年 1 月 18
日付薬食機発 0118 第１号「次世代医療機器評価指標の公表について」
・ 別添 4「角膜上皮細胞シートに関する評価指標」
7. 厚生労働省大臣官房参事官通知：平成 26 年 9 月 12 日付薬食機参発 0912 第 2 号「次世代医療機器・再生医療等製品評価指標の公表について」・ 別紙 1「同種 iPS（様）細胞由来網膜色素上皮細胞に関する評価指標」
8. 厚生労働省医薬・生活衛生局医療機器審査管理課長通知：令和 5 年 3 月 31 日付薬生機審発 0331 第 15 号「次世代医療機器・再生医療等製品評価指標の公表について」

・ 別紙「ヒト（同種）iPS 細胞由来心筋細胞シートを用いた虚血性心筋症の治療に関する評価指標」
9. 厚生労働省医薬食品局長通知：平成 24 年 9 月 7 日付薬食発 0907 第 5 号「ヒト（同種）iPS（様）細胞加工医薬品等の品質及び安全性の確保に関する指針」
5. 議事内容①令和 5 年度の WG 座長及び委員と出席者による自己紹介が行われた。WG 座長・委員は下記の通り（敬称略）
WG 座長
井上 幸次

日野病院組合 日野病院 名誉病院長

WG 委員（五十音順）
稲富 勉

国立長寿医療研究センター 感覚器センター センター長

梅澤 明弘

国立成育医療研究センター研究所 所長

堀 裕一

東邦大学医学部 眼科学講座 教授

万代 道子

神戸アイセンター病院 研究センター センター長②次世代医療機器・再生医療等製品評価指標作成事業について厚生労働省医薬・生
活衛生局医療機器審査管理課 田中医療機器係長より説明があった。
③令和 4 年度までの再生医療審査 WG の活動内容及び今年度の活動計画について、事務局より説明があった。
④TF にて作成された「ヒト（同種）iPS 細胞由来角膜上皮細胞シートに関する評価
指標（案）」（資料 5）の内容について西田 TF 委員長により説明され、井上 WG 座
長及び WG 委員にて議論された。主な議論の内容は、以下の通り。
ü「角膜上皮細胞シートに関する評価指標（H22.1.18 薬食機発 0118 第１号別添
4）」（資料 6）の内容を見直しつつ本評価指標をベースとして、同じく眼科分野
でヒト（同種）iPS 細胞由来細胞加工製品に係る「同種 iPS（様）細胞由来網膜
色素上皮細胞に関する評価指標（H26.9.12 薬食機参発 0912 第 2 号別紙 1）」（資料 7）及び、ヒト（同種）iPS 細胞由来細胞シート製品として最新の評価指標である「ヒト（同種）iPS 細胞由来心筋細胞シートを用いた虚血性心筋症の治療に関する評価指標（R5.3.31 薬生機審発 0331 第 15 号別紙）」
（資料 8）を参考にして、令和 5 年度はヒト（同種）iPS 細胞由来角膜上皮細胞シートに関する評価
指標（案）を作成する。そして、令和 6 年度はヒト（同種）iPS 細胞由来角膜内皮細胞加工製品に関する評価指標（案）作成する予定。

ü「4. 用語の定義（4）角膜上皮幹細胞疲弊症」について、内容を確認し再検討する。
ü「4. 用語の定義（9）バリア機能」について、角膜上皮のバリア機能であることが判るように修正する。

ü「5. 評価に当たって留意すべき事項（3）製品の品質管理」について、試験実施等の要求の強弱を考慮して、語尾の表現について再検討する。

ü「5.（3）f）機能評価」のバリア機能について、要求の表現を弱める方向で再検討する。

ü「5. （7）臨床試験（治験）③有効性評価」において、有効性評価の項目に挙げられている「3) 角膜上皮の透明性」について、評価法が現在確立されていない
ため削除が提案された。また、「6) 瞼球癒着」については、用語の定義に加える提案がされた。

⑤議論の内容については、事務局で取り纏め、今後 TF にて必要な加筆修正等を行
い、令和 5 年度第 2 回 WG 会議での検討へと進めていく。
⑥次回の WG 会議日程について
次世代医療機器・再生医療等製品評価指標検討会再生医療審査 WG
令和 5 年度第 2 回委員会
日時：令和 6 年 1 月 26 日（金） 14～16 時
場所：オフィス東京 C5 会議室

次世代医療機器・再生医療等製品評価指標作成事業
再生医療審査 WG 令和五年度第二回 TF 委員会議事録（概要）1. 開催期間：2023 年 12 月 4 日（月）〜22 日（金）2. 開催方法：メール等による議論
3. 参加者（WG 座長、TF 委員長以下 TF 委員五十音順・敬称略）
委員：井上幸次（日野病院）、西田幸二（大阪大学）、大家義則（大阪大学）、金村米
博（大阪医療センター）、齋藤潤（京都大学）、相馬剛至（大阪大学）、高柳泰（大阪大学）

4. 議事内容①再生医療審査 WG 令和 5 年度第 1 回委員会（2023 年 12 月 1 日開催）にて議論された以下の内容について、TF 委員にて検討された。
ü 「4. 用語の定義（4）角膜上皮幹細胞疲弊症」について、内容を確認し再検討する。
ü 「4. 用語の定義（9）バリア機能」について、角膜上皮のバリア機能であることが判るように修正する。
ü 「5. 評価に当たって留意すべき事項（3）製品の品質管理」について、試験実施等の要求の強弱を考慮して、語尾の表現について再検討する。
ü 「5.（3）f）機能評価」のバリア機能について、要求の表現を弱める方向で再検討する。
ü 「5. （7）臨床試験（治験）③有効性評価」において、有効性評価の項目に挙げられている「3) 角膜上皮の透明性」について、評価法が現在確立されていないた
め削除が提案された。また、「6) 瞼球癒着」については、用語の定義に加える提案がされた。
②上記を踏まえた加筆修正内容について、TF 委員にて確認した。再生医療審査 WG
令和 5 年度第 2 回委員会にて、WG 委員による確認を行う予定。
③次世代医療機器・再生医療等製品評価指標検討会再生医療審査 WG 会議日程
令和 5 年度第 2 回 WG 委員会
日時：令和 6 年 1 月 26 日（金） 14～16 時
場所：オフィス東京 C5 会議室

次世代医療機器・再生医療等製品評価指標作成事業
再生医療審査 WG 令和 5 年度第 2 回議事録（概要）1. 開催日時：2024 年 1 月 26 日（金）14 時 00 分〜16 時 00 分
2. 開催場所：オフィス東京 C5 会議室
3. 出席者（WG 座長以下委員五十音順・敬称略）
委員：井上幸次（日野病院）、稲富 勉*（長寿医療研究センター）、梅澤明弘（成育医療研究センター研究所）、堀 裕一（東邦大学）、万代道子（神戸アイセンター
病院）、西田幸二*（大阪大学；TF 委員長）
厚生労働省：田中孝仁*、甲斐晴稀*
医薬品医療機器総合機構：小林陽子、中川寛之
事務局（国立医薬品食品衛生研究所）：安田 智、澤田留美、河野 健、草川森士
オブザーバー：十河 友*（経産省）、山根史帆里*（経産省）*

Web 参加

4. 配布資料
1. 令和五年度第二回委員会議事次第
2. 令和五年度第一回委員会議事録（概要）3. ヒト（同種）iPS 細胞由来角膜上皮細胞シートに関する評価指標（案）TF 作成
4. 角膜上皮・内皮細胞の再生医療（稲富委員ご講演資料）
5. 厚生労働省医薬食品局審査管理課医療機器審査管理室長通知：平成 22 年 1 月 18
日付薬食機発 0118 第１号「次世代医療機器評価指標の公表について」
・ 別添 4「角膜上皮細胞シートに関する評価指標」
6. 厚生労働省大臣官房参事官通知：平成 26 年 9 月 12 日付薬食機参発 0912 第 2 号「次世代医療機器・再生医療等製品評価指標の公表について」・ 別紙 1「同種 iPS（様）細胞由来網膜色素上皮細胞に関する評価指標」
7. 厚生労働省医薬・生活衛生局医療機器審査管理課長通知：令和 5 年 3 月 31 日付薬生機審発 0331 第 15 号「次世代医療機器・再生医療等製品評価指標の公表について」
・ 別紙「ヒト（同種）iPS 細胞由来心筋細胞シートを用いた虚血性心筋症の治療に関する評価指標」

8. 厚生労働省医薬食品局長通知：平成 24 年 9 月 7 日付薬食発 0907 第 5 号「ヒト（同種）iPS（様）細胞加工医薬品等の品質及び安全性の確保に関する指針」

5. 議事内容①令和 5 年度第一回委員会会議議事録（概要）について事務局より説明があった。
②「ヒト（同種）iPS 細胞由来角膜上皮細胞シートに関する評価指標（案）」について、西田 TF 委員長より、第一回 WG 会議での議論を基に TF にて修正した点について説明がなされ、その後討議した。討議内容は、以下の通り。
ü「５．評価に当たって留意すべき事項（３）製品の品質管理」について、それぞれの項目（a）形状の確認、b）細胞シートとして回収可能であることの確認、c）
細胞数及び生存率、d）角膜上皮細胞としての特異性の確認、e）主構成細胞の確認、f）機能評価、g）未分化細胞が混在していないことの確認）は検討する必要がある旨を、最初のパラグラフ内に明記することが提案され、修正することとなった。それぞれの方法については、要求度を弱めた形で例示することで了承された。

ü「５．評価に当たって留意すべき事項（３）製品の品質管理 g）未分化細胞が混在していないことの確認」について、今後新たな評価方法が開発される可能性も鑑みて「代表的に」を削除することとした。

ü「５．評価に当たって留意すべき事項（６）非臨床試験 ③最終製品の非臨床安
全性及び有効性を評価する試験」の2段落目の最後の文章「したがって、造腫瘍性評価を主とした最終製品の非臨床安全性評価に関しては、品質管理のための造腫瘍性評価としてのin vivo試験をもって、ある程度の評価の類推が可能と考えられる。
」について、類推→推定へと変更する。
③議論の内容については、事務局で取り纏め、今後 TF にて必要な加筆修正等を行い、その後 WG 委員によるメールベースでの確認を行う。
④稲富委員より「角膜上皮・内皮細胞の再生医療」について講演頂き、その後質疑応答を行い、来年度の WG 活動に向けての情報共有を行った。

III. ヒト（同種）iPS 細胞由来角膜上皮細胞シートに関する評価指標（案）1. はじめに
2. 本評価指標の対象
3. 本評価指標の位置づけ
4. 用語の定義
5. 評価に当たって留意すべき事項(1) 原料等(2) 製造工程において特に注意が必要な事項(3) 製品の品質管理(4) 製品の安定性試験(5) 非細胞材料の品質・安全性(6) 非臨床試験(7) 臨床試験（治験）6. 参考文献

ヒト（同種）iPS 細胞由来角膜上皮細胞シートに関する評価指標（案）１．はじめに

ヒト由来の人工多能性幹細胞（iPS 細胞）のうち、同種由来 iPS 細胞を加工した製品（以下｢ヒト（同種）iPS 細胞加工製品｣という。
）の品質及び安全性を確保するための基本的な技術要件は、「ヒト（同種）iPS（様）細胞加工医薬品等の品質及び安全性の確保について」（平成 24 年９月７日付け薬食発 0907 第５号厚生労働省医薬食品局長通知）に定められているところである。
本評価指標は、ヒト（同種）iPS 細胞加工製品のうち特に角膜上皮障害等の治療を目的として適用される再生医療等製品（平成 25 年法律第 84 号第１条の規定による改正後の薬事法（医薬品、医療機器等の品質、有効性及び安全性の確保等に関する法律）第２条第９項に規定する「再生医療等製品」をいう。以下同じ。
）について、上述の基本的な技術要件に加えて当該製品特有の留意すべき事項を示すものである。

２. 本評価指標の対象

本評価指標は、ヒト（同種）iPS 細胞加工製品のうち特に角膜上皮障害等の治療を目的として適用される再生医療等製品について、基本的な技術要件に加えて品質、有効性及び安全性の評価にあたって留意すべき事項を示すものである。

３．本評価指標の位置づけ

本評価指標は、技術開発の著しいヒト（同種）iPS 細胞加工製品を対象とするものであることを勘案し、留意すべき事項を網羅的に示したものではなく、現時点で考えられる点について示している。よって、今後の更なる技術革新や知見の集積等を踏まえ改訂されるものであり、申請内容に関して拘束力を有するものではない。製品の評価に当たっては、個別の製品の特性を十分理解した上で、科学的な合理性をもって柔軟に対応することが必要である。なお、本評価指標の他、国内外のその他の関連ガイドラインを参考にすることも考慮すべきである。
また、個別の製品において必要となる評価については、独立行政法人医薬品医療機器総合機構に相談することが強く勧められる。

４．用語の定義（１） 細胞シート：細胞同士、または細胞と支持体が結合してシート状の形態を呈したものをいう。
（２） 角膜上皮：角膜は、強膜とともに眼球の外壁を構成する直径11～12mm程度の透明な組織で、外界からの光を屈折させるレンズの役割を果たす。表面から角膜上皮、
1

角膜実質、角膜内皮の3層で構成される。そのうち、角膜上皮は４ ～ ５ 層の角膜上皮細胞から成る組織である。
（３） 角膜上皮障害：角膜上皮幹細胞疲弊症をはじめとする種々の要因から、角膜上皮の機能が障害された病態全般を指す。
（４） 角膜上皮幹細胞疲弊症：角膜上皮障害の中でも特に重症のケースで、角膜輪部に存在する角膜上皮幹細胞が外傷や疾病によって消失した状態を指す。
（５） セル・バンク：均一な組成の内容物をそれぞれに含む相当数の容器を集めた状態
で、一定の条件下で保存しているものである。個々の容器には、単一の細胞プールから分注された細胞が含まれている。
（ICH Q5D「生物薬品 バイオテクノロジー応
用医薬品／生物起源由来医薬品 製造用細胞基剤の由来、調製及び特性解析について」（平成 12 年７月 14 日付け医薬審第 873 号厚生省医薬安全局審査管理課長通知）の定義と同じ）（６） クロスコンタミネーション：サンプル間の混入のこと。交叉汚染とも呼ばれる。製造に用いられる原料の間、中間体の間等での混入を意味する。例えば、あるセル・バンクに由来する細胞に別のセル・バンクに由来する細胞が混入する場合や、ウイ
ルス不活化後の原料に不活化前の原料が混ざってしまう場合等が挙げられる。
（７） 代替指標：目的とする対象指標が測定困難な場合に，事前に相関づけられた代替可能な指標。

（８） 支持体：細胞をシート状に形成する際に足場として非細胞材料を用いる場合があり、ここではそれを支持体と称する。移植・投与される細胞シート製品に含有されるか否かを問わない。
（９） 角膜上皮バリア機能：角膜上皮層のような重層化している上皮細胞層では、表層細胞の細胞間がタイトジャンクションという接着構造で強固に結合して、異物や水などを自由に通さない構造となっている。この機能をバリア機能という。
（１０） 瞼球癒着：眼瞼の結膜と眼球の結膜が部分的または完全に癒着した状態を指す。
（１１） 細隙灯顕微鏡検査：細隙光と呼ばれる帯状の光線を眼球に照射し、生体顕微鏡で観察する検査。角膜、前房、虹彩、水晶体など主に前眼部を観察する。専用のレンズを用いることで後眼部の観察も可能である。

５．評価に当たって留意すべき事項

本評価指標は、当面、既に再生医療等製品の原材料として株化されているヒト（同種）iPS 細胞（細胞株）を主たる原材料として製造所に受け入れ、これを製造所において加工して製造された、ヒト（同種）iPS 細胞加工製品としての角膜上皮細胞を含むシート（以下、角膜上皮細胞シート）の評価に適用することを想定している。再生医療等製品の製造
所内でヒト（同種）iPS 細胞を体細胞から新たに樹立し、これを原材料とした再生医療等
2

製品の製造を意図するような場合には、本評価指標を参照しつつ、「ヒト（同種）iPS（様）細胞加工医薬品等の品質及び安全性の確保について」（平成 24 年９月７日付け薬食発 0907 第５号厚生労働省医薬食品局長通知）等を参考とすること。
（１）原料等原料等となる iPS 細胞は、再生医療等製品の原材料として株化されたヒト（同種）iPS 細胞であって、一定の製造工程を経ることにより角膜上皮細胞へ分化することが確認されている、又は合理的に予測されるものである必要がある。ヒト体細胞への初期化
遺伝子導入による遺伝子リプログラミングによりヒト iPS 細胞が樹立されている場合
は、導入された遺伝子の残存が否定されていることが望ましい。残存が否定できない場
合には、導入遺伝子が最終製品である角膜上皮細胞シートの品質及び安全性に悪影響を与えないことを確認する必要がある。

（２）製造工程において特に注意が必要な事項
角膜上皮細胞シート（最終製品）の製造にあたっては、製造方法を明確にし、可能な範囲でその妥当性を以下の項目で検証し、一定の品質を保持すること。
①ロット構成の有無とロットの規定
最終製品及び中間製品がロットを構成するか否かを明らかにすること。ロットを構成する場合には、ロットの内容について規定しておくこと。
②製造方法
原材料となるヒト iPS 細胞株の履歴、および製造所への受入れから、セル・バンクを構築する場合にはその工程を含め、分化段階の進んだ細胞を経て最終製品に至る製造方法の概要を示すとともに、具体的な処理内容及び必要な工程管理、品質管理の内容を明らかにすること。
a）受入検査
原材料となるヒト iPS 細胞株について、製造所への受入れのための試験（検査）項目（例えば、目視検査、顕微鏡検査、生存率、細胞の特性解析、細菌、真菌、ウイルス等の混入の否定等）と各項目の判定基準を設定すること。表現型、遺伝形質、特有の機能等の特性、細胞生存率及び品質に影響を及ぼさない範囲で、必要かつ可能な場合は、細菌、真菌、ウイルス等の検査を行うこと。結果が陽性の場合には、ヒト iPS 細胞株のストック及びその輸送における汚染の有無を確認した上で、改めてヒト iPS 細胞株を入手する。
なお、技術的な理由により、工程を一部進めた上で検査を行うことが適切な場合にあっては、受入れ後の適切な時点で検査を実施すること。例えば、凍結ヒト iPS 細胞株を原材料製造時の試験（検査）結果（Certificate of Analysis）を基に受入れた後、解凍して3

拡大培養を実施する際に追加の検査を行うことが挙げられる。治験を開始する前段階の場合は、それまでに得られた試験検体での実測値を提示し、これらを踏まえた暫定値を示すこと。
b）細胞のバンク化
角膜上皮細胞シートの製造にあたっては、製造所に受入れたヒト iPS 細胞株から、最終製品の製造までのいずれかの過程において、セル・バンクを構築する場合と、セル・バンクを構築しない場合の両者が想定される。セル・バンクを構築する場合には、その作製方法および特性解析、保存・維持・管理・更新方法、その他の各作業工程及び試験に関する手順等について詳細を明らかにし、ICH Q5D 等を参考として、その妥当性を示すこと。ただし、より上流の過程で評価されていることに起因する正当な理由により検討事項の一部を省略することは差し支えない。
c）最終製品の構成要素となる細胞の作製
製造所に受入れたヒト iPS 細胞株、またはそのセル・バンクから、最終製品の構成要
素となる細胞を作製する方法（例えば、分化誘導方法、目的とする細胞の分離・培養の方法、培養の各段階での培地、培養条件、培養期間、収率等）を明確にし、可能な範囲でその妥当性を明らかにすること。
d）製造工程中の取り違え及びクロスコンタミネーション防止対策
角膜上皮細胞シート（最終製品）の製造にあたっては、製造工程中の取違え及びクロ
スコンタミネーションの防止が重要であり、工程管理における防止対策を明らかにすること。
e）複数の細胞培養加工施設での製造及び病院内での細胞加工を行う際の工程の条件の設定
複数の細胞培養加工施設で製造を完結する場合は、施設間での中間製品の輸送に関する条件をあらかじめ確定し、中間製品の出荷及び受入れ、輸送などの条件が満たされているかのモニタリングを行うこと。

（３）製品の品質管理
角膜上皮細胞シート（最終製品）の品質管理における留意点として、例えば以下に挙げた事項が考えられる（参考資料１、２、３）が、必要かつ適切であれば別の試験項目の採用又は追加を検討すること。その際には、各試験項目の設定根拠及び試験方法の妥
当性について説明する必要がある。工程内管理の管理値及び品質規格の規格値の設定について、治験を開始する前段階の場合にあっては、それまでに得られた試験検体での実測値を提示し、これらを踏まえた暫定値を示すこと。また、出荷製品そのもの又はその一部に対して試験の実施が技術的に困難である場合にあっては、妥当性を示した上で、並行して製造した製品等、代替とする検体を用いて試験を実施すること。
4

なお、角膜上皮細胞シート（最終製品）の品質管理の設定にあたっては、その移植方法を明らかにすること。移植方法には、例えば、角膜上皮細胞シート（最終製品）が容器等に格納された状態から、必要数（1 治療あたり 1 枚等）を回収し、適切な適用部位（瘢痕部位除去後の疾患眼表面等）に貼りつけて移植すること等が考えられる。
a）形状の確認、b）細胞シートとして回収可能であることの確認、c）細胞数及び生存率、d）角膜上皮細胞としての特異性の確認、e）主構成細胞の確認、f）機能評価、
g）未分化細胞が混在していないことの確認、については検討する必要がある。方法については以下に示す。

a）形状の確認
最終製品の形状に関して、目視および位相差顕微鏡観察等により、全体の形状（例
えば、透明な膜状組織であること）や、上皮細胞特有の細胞形態を確認すること（例
えば、敷石状細胞形態等）等が考えられる。
b）細胞シートとして回収可能であることの確認
最終製品の力学的適合性に関して、例えば、移植時と同様の手法で培養容器等から剥離、回収するまでの操作を行い、細胞シートとしての破損がないことを確認すること等が考えられる。
c）細胞数及び生存率
最終製品における細胞の数及び生存率について基準を設定する必要がある。細胞数を測定する方法としては、最終製品や中間製品の一部を抜き出して細胞懸濁液とし、バリデーション可能な測定方法（血球計算盤やセルカウンターで測定する方法等）にて測定すること等が考えられる。細胞生存率を測定する方法として、バリデーション
可能な方法（トリパンブルーを用いた色素排除法や蛍光色素を用いた方法等）にて、生細胞及び死細胞を計数すること等が考えられる。
d）角膜上皮細胞としての特異性の確認
最終製品を構成する細胞について、角膜上皮関連遺伝子（例えば、Keratin3、Keratin12等）（参考資料４，５）が発現していることを免疫染色で確認すること等が考えられる。
e）主構成細胞の確認
最終製品を主として構成する細胞の性質と割合について、確認する必要がある。この確認にあたっては、上皮系細胞マーカー（例えば、Keratin14、pancytokeratin 等）の発現率を測定することで、主構成細胞が上皮系細胞であることと、その割合が確認できる（参考資料１，３）。測定方法については、例えば、最終製品を細胞懸濁液として免疫染色を行い、フローサイトメトリーによって計測する等が考えられる。
f）機能評価5最終製品について、治療用途に整合性のある機能特性を有することを確認する。角
膜上皮細胞シートとしての特性を解析する場合は、以下が挙げられる。
・幹細胞、前駆細胞性
角膜上皮細胞シート（最終製品）は、製品内に含まれる上皮幹細胞、前駆細胞が新たな上皮細胞を供給し続けることによって、一定周期で細胞のターンオーバーが繰り返される（参考資料１）。それにより上皮組織が維持されることで、移植後も長期間に渡り機能を維持する。幹細胞、前駆細胞性の確認として、これらの性質を示すことが報告されているマーカー（例えば、p63 等）（参考資料６）の発現を免疫染色で確認すること等が考えられる。
・角膜上皮バリア機能
角膜上皮細胞シート（最終製品）のバリア機能を確認する場合には、同機能との相関が報告されているマーカー（例えば、ZO-1 等）（参考資料７）の発現を免疫染色で確認すること等が考えられる。
g）未分化細胞が混在していないことの確認
最終製品への未分化細胞の混在については、定量 PCR によるマーカー遺伝子の発現定量等による評価等が考えられる。マーカー遺伝子としては、特に LIN28 の遺伝子定量解析が未分化細胞に対する特異性が高くかつ高感度であり、評価方法として用いることができる。なお造腫瘍性評価のための試験に関しては非臨床試験の項目も参照すること。

（４）製品の安定性試験
最終製品を細胞シートとし、細胞シートの状態で輸送する場合には、保存安定性に加え、輸送安定性（温度、振動、気圧変化等の影響）を評価した上で保存条件及び使用期限を設定し、適切な容器、保存液及び運搬形態を選択すること。製品形態又は細胞種によって、製品安定性を保つための適切な保存形態、温度条件、輸送液等が異なる可能性があるため、製品毎に適切な組み合わせを検討し、安定性を担保する必要がある。

（５）非細胞材料の品質・安全性

最終製品に関係する非細胞材料として、製造工程中で最終製品と接触するもの（例えば、細胞シート培養工程に用いる培養容器等）のほか、支持体（例えば、羊膜、フィブリンゲル等）を用いる場合も考えられる。支持体不使用でも最終製品の細胞シートを形成することが可能であるが、支持体等を用いる場合は、それも含めて材料自体の品質・安全性に関する知見について明らかにすること。

（６）非臨床試験
6

ヒト（同種）iPS細胞を加工して製造される再生医療等製品の造腫瘍性を評価する上では、「原料となるiPS 細胞の造腫瘍性と最終製品の造腫瘍性との相関・因果関係は未解明である」という点に注意が必要である。すなわち、臨床適用に際しては、原料となるヒト（同種）iPS細胞ではなく、あくまで最終製品としてのヒト（同種）iPS細胞加工製品の造腫瘍性評価が最も重要であることを常に留意しなければならない。したがって、造腫瘍性試験については最終製品を用い、検出限界が既知の試験系を用いて造腫瘍性の評価を行うことが有用である。最終製品の造腫瘍性の評価には目的別に大きく2 種類ある。「品質管理」のための造腫瘍性試験（造腫瘍性細胞の存在量の確認）及び「非臨床安全性評価」のための造腫瘍性試験（最終製品の細胞がヒトでの投与部位に相当する微小環境で造腫瘍性を示すかどうかの確認）であり、これらは区別して評価することが重要である。なお、造腫瘍性の評価にあたっては、「ヒト細胞加工製品の未分化多能性幹細胞・形質転換細胞検出試験、造腫瘍性試験及び遺伝的安定性評価に関するガイドラインについて」（令和元年6 月27 日付け薬生機審発0627 第1 号厚生労働省医薬・生活衛生局医療機器審査管理課長通知）等も参考にすること。

①

最終製品の品質管理のための造腫瘍性試験

品質管理のための造腫瘍性試験としては、高感度な特性を有するin vivo 評価法として、重度免疫不全動物（例えば、NOD/SCID/γCnull (NOG)マウス、NOD/SCID/IL2rγKO(NSG) マウス、Rag2-γC double-knockout (DKO) マウス）への皮下投与試験等が挙げられる。最終製品の造腫瘍性の要因となり得る未分化細胞や形質転換細胞を検出する試験としては、in vitro 評価法の適用が考えられる。未分化細胞の検出のための評価法としては、例えば、未分化細胞マーカー（LIN28 、TRA-1-60等）を指標にしたフローサイト
メトリーや定量RT-PCR、最終製品を原料等のiPS 細胞の培養条件に戻して一定期間培養する評価法等が挙げられる。形質転換細胞の検出のための評価法としては、例えば、細胞増殖特性解析（参考資料１）やデジタル軟寒天コロニー形成試験等が挙げられる。
最終製品に適した評価法を用い、造腫瘍性リスクを総合的に評価することが重要である。

②

最終製品の非臨床安全性及び有効性を評価する試験

最終製品の非臨床試験の目的は、ヒトでの投与部位と同一の局所環境で最終製品が示す安全性と有効性を評価することにある。最終製品である角膜上皮細胞シートを、ウサ
ギを用いて作製した疾患モデル動物に移植して評価した報告は有るものの、異種移植のため免疫抑制剤の投与が必要となることや、それでもなお拒絶を抑制できず短期で移植物が脱落すること等から、ヒトと同一の局所環境での有意な評価とは言い難い。また、免疫不全小動物（マウス、ラット等）での角膜上皮細胞シート移植は技術的に困難であ7

り、これまでに報告もされていない。このようにモデル動物を用いた適切な評価が困難な現状を鑑みて、ヒト臨床での移植症例があれば、たとえ少数例であったとしても非臨床試験に優先して参照することも有意であると考えられる。
また、最終製品の投与部位の角膜は無血管組織であり、もとより腫瘍形成等の病変は極めて稀である。それに対し、品質管理のための造腫瘍性試験として挙げられる重度免疫不全動物（マウス等）への皮下投与試験は、角膜と異なり血管を豊富に有する皮下組織への投与であり、より腫瘍形成を促し易い微小環境であると考えられる。したがって、造腫瘍性評価を主とした最終製品の非臨床安全性評価に関しては、品質管理のための造腫瘍性評価としての in vivo 試験をもって、ある程度の評価の推定が可能と考えられる。
いずれにしろ、最終製品である角膜上皮細胞シートの非臨床安全性及び有効性の評価にあたっては、現在取得できる科学的に有意な情報から総合的に判断することが重要である。

（７）臨床試験（治験）①適応
角膜上皮障害を適応対象とする。特に角膜上皮幹細胞疲弊症が多く含まれる。
臨床試験においては、有効性及び安全性評価に適した集団を選択するために、世界的に普及した診断基準、重症度分類等を用いて、当該治療法に期待される臨床上の位置付け等を明確にした上で、選択・除外基準や評価基準を設定する必要がある。

②症例数の設定症例数は、科学的合理性に基づき、試験目的、検証すべき仮説、試験の達成基準及び試験デザインに応じて設定する。

③有効性評価
一般的に主要な有効性評価は、信頼性及び妥当性が検討され国際的に普及した評価項目を用いることが必要であり、評価時における評価項目のベースラインからの変化や改善症
例の割合等を評価に用いる。副次的な有効性評価は、主要評価項目で得られた結果の妥当性を検討するだけでなく、得られた結果の臨床的意義を幅広く検討するために有用である。主観が影響する検査項目や、測定機器の使用方法によってバラツキが想定される検査項目では、評価者間で統一した評価を行い、評価者間のばらつきを最小限とすることができるよう、評価者に対する教育訓練等の方策を十分に検討する必要がある。
眼科領域では、ETDRS 視力表や小数視力表などを用いた矯正視力の測定が国際的に広く普及しており、有効性評価項目として考えうる。しかしながら角膜上皮幹細胞疲弊症を含む
8角膜上皮障害患者においては、シート移植による治療の対象となる角膜上皮以外の部位の眼疾患（角膜実質混濁、白内障、網膜疾患、緑内障、視神経疾患など）を合併している場合があり、合併している場合にはシート移植が奏功して角膜上皮の透明性が回復しても、他の眼疾患が原因で視力回復には必ずしもつながらないことも想定される。よって、臨床試験において矯正視力を有効性効果判定項目と設定する場合は上記を考慮する必要がある。
これらの状況を考慮し、以下のような項目等の術後の術前に対する改善度が有効性評価の項目として挙げられる。
１）

角膜上皮障害（角膜上皮幹細胞疲弊症）の重症度等

２）

角膜混濁

３）

矯正視力

４）

角膜血管新生

５）

瞼球癒着

６）

自覚症状（眼痛、異物感、流涙、羞明）④安全性評価有害事象とは、医薬品等（再生医療等製品を含む。以下この項において同じ。
）を投与された患者又は被験者に生じたあらゆる好ましくない医療上のできごとであり、当該製品の投与との因果関係の有無は問わない。つまり、医薬品等が投与された際に起こる、あらゆる好ましくない、又は意図しない徴候（臨床検査値の異常を含む）、症状又は病気のことである。有害事象が認められた場合は、症例報告書に事象名、重症度、転帰、発現及び転帰が確認された時期、治験薬等（治験製品を含む、以下この項において同じ。
）の服薬状況並びに処置の有無及びその内容等を記録するとともに、重篤な有害事象か否か、及び治験薬等との因果関係を判定する。
臨床試験では、iPS 細胞由来角膜上皮細胞シート移植後に留意して観察すべき有害事象として、腫瘍形成や拒絶反応が挙げられる。眼科診療で用いられる細隙灯顕微鏡検査によって移植部位を直接観察できることから、腫瘍形成や拒絶反応の発生について鋭敏に観察することができる。
なお、角膜上皮は免疫原性が低いと報告されており（参考資料８）、移植にあたって免疫抑制剤を使用する場合と使用しない場合のどちらのケースも考えられる。免疫抑制剤を使用する場合は、投与による有害事象にも注目が必要である。

9

６．参考資料

1.

Hayashi R, Ishikawa Y, Sasamoto Y, Katori R, Nomura N, Ichikawa T, Araki S, Soma T,
Kawasaki S, Sekiguchi K, Quantock AJ, Tsujikawa M, Nishida K. Co-ordinated oculardevelopment from human iPS cells and recovery of corneal function. Nature. 2016 Mar
17;531(7594):376-80. doi: 10.1038/nature17000.

2.

Hayashi R, Ishikawa Y, Katori R, Sasamoto Y, Taniwaki Y, Takayanagi H, Tsujikawa M,
Sekiguchi K, Quantock AJ, Nishida K. Coordinated generation of multiple ocular-like celllineages and fabrication of functional corneal epithelial cell sheets from human iPS cells. Nat
Protoc. 2017 Apr;12(4):683-696. doi: 10.1038/nprot.2017.007.

3.

Hayashi R, Ishikawa Y, Katayama T, Quantock AJ, Nishida K. CD200 facilitates the isolation of
corneal epithelial cells derived from human pluripotent stem cells. Sci Rep. 2018 Nov
8;8(1):16550. doi: 10.1038/s41598-018-34845-2.

4.

Moll R, Franke WW, Schiller DL, Geiger B, Krepler R. The catalog of human cytokeratins:
patterns of expression in normal epithelia, tumors and cultured cells. Cell. 1982 Nov;31(1):1124. doi: 10.1016/0092-8674(82)90400-7.

5.

Schermer A, Galvin S, Sun TT. Differentiation-related expression of a major 64K corneal keratin
in vivo and in culture suggests limbal location of corneal epithelial stem cells. J Cell Biol. 1986
Jul;103(1):49-62. doi: 10.1083/jcb.103.1.49.

6.

Pellegrini G, Dellambra E, Golisano O, Martinelli E, Fantozzi I, Bondanza S, Ponzin D, McKeon
F, De Luca M. p63 identifies keratinocyte stem cells. Proc Natl Acad Sci USA. 2001 Mar
13;98(6):3156-61. doi: 10.1073/pnas.061032098.

7.

Ko JA, Yanai R, Nishida T. Up-regulation of ZO-1 expression and barrier function in cultured
human corneal epithelial cells by substance P. FEBS Lett. 2009 Jun 18;583(12):2148-53. doi:
10.1016/j.febslet.2009.05.010.

8.

Yoshinaga Y, Soma T, Azuma S, Maruyama K, Hashikawa Y, Katayama T, Sasamoto Y,
Takayanagi H, Hosen N, Shiina T, Ogasawara K, Hayashi R, Nishida K. Long-term survival in
non-human primates of stem cell-derived, MHC-unmatched corneal epithelial cell sheets. Stem
Cell Reports. 2022 Jul 12;17(7):1714-1729. doi: 10.1016/j.stemcr.2022.05.018.

10

IV. 調査事項
1. 角膜上皮・内皮の再生医療

稲富勉

2024/1/23

角膜上皮疲弊症のアンメットニーズ

角膜上皮・内皮細胞の再生医療

急性期・再燃Stem Cell 移植⚫ Stem Cell Deficiency⚫ Vascularization⚫ Inflammation⚫ Fibrosis

瘢痕化⚫ Tear Deficiency

国立長寿医療研究センター
稲富 勉

瘢痕抑制

日本での２つの上皮シートの開発

世界をリードする日本の培養上皮移植と再生医療
First in man
at KPUM1999年 CLET
2002年 COMET

Approve
2020年 Nepic®
2021年 Ocularu®
2022年 Sakracy®

医師主導治験

Amniotic Membrane
Koizumi (Kinoshita) 2001
Nakamura (Kinoshita) 2004

再生医療等製品
承認・販売
技術移管
保険収載

先進医療
臨床研究

Temp-sensitive Culture Dish
Nishida 2002, 2004

AM

非臨床試験

医療還元とデーター蓄積と共有
改良と新規医療の開発

First in man in the world
Pellegrini G et al. Lancet 1997

Culture insert

22~25mm⚫ 羊膜

Sakracy ®

Nepic ® Ocural ®
⚫ 温度感受性皿

Copyright © Hirosaki Lifescience Innovation, Inc. All Right Reserved.

日本での上皮再生医療製品

培養方法と移植計画スケジュール

Trade name

Nepic ®

Ocural ®

Sakracy ®

Cell source

角膜上皮

口腔粘膜上皮口腔粘膜上皮

Oral tissue
BiopsyCell
manipulation

Adjusting
Period(frozen)Shipping

Ocural ®
Product

Effect

上皮シート
角膜再建

上皮シート

羊膜上培養上皮シート

角膜再建

癒着解除

LSCD III, IIB, (IIA)

Bilateral LSCD
結膜癒着

JETC/NIDEKOP
Cell grow culture period

Sheet culture period(> 14 days)(14 days)

Max Transportation time
60hr (20-28C)+3T3 fibroblast
Shipping

Indication

Unilateral LSCD

Sakracy ®
Hirosaki LI

OP
Culture period(14days)
Approve

2020/3/19

2021/6/11

2022/1/20

Max Transportation time
55hr (15-20C)

Feeder cells –Serum -

1

2024/1/23

日本での２つの培養口腔粘膜上皮シート
Ocural®

Sakuracy®

角膜再建

癒着解除

基質なしの透明性が高い

結膜・角膜再建など応用が可能

Large size(≒25mm diameter)

Flexible shape(19mm diameter)

温度感受性皿（3T3 feeder co-culture)

羊膜上培養上皮シート(feeder -/ serum -)培養上皮シート移植の普及と現状
0

5

10

A
B
C
D

新しい知見

E
F

（症例数）

G

■ オキュラルH
I

34%■ ネピック66%

2020/3/19~

2021/6/11~

J
K
L
M
N

Stage IIB

Stage III

情報と経験の
共有

製品名

症例数

ネピック

約

20 症例

P

オキュラル

約

40 症例

Q

総計

約

60 症例

O

（施設） R

J-TEC 提供データ

9

角膜内皮細胞と水疱性角膜症

角膜内皮細胞による透明性維持

水疱性角膜症（角膜内皮障害）

健常角膜

角膜含水率(78%)の維持と前房水移動調節

バリアー

加齢、眼科手術、外傷
フックス角膜内皮ジストロフィなど

膨潤圧
メタボリックポンプ• 角膜の透明性維持に必須• 霊長類では増殖しない

500 cells/mm2未満で角膜混濁しはじめ失明に至る

角膜内皮細胞密度
2000〜3000 cells/mm2

Na+/K+ ATPs
炭酸脱水素酵素
アクアポリン１

蒸発

眼圧

角膜の機能不全の中で水疱性角膜症（角膜内皮障害）の占める割合は60％以上
木下茂, 井上幸次，坪田一男, 西田幸二 他.
日本眼科学会雑誌. 2014

角膜内皮細胞密度と加齢減少
生体内では増殖しない上皮◼ 細胞数（40-50万）
内皮Survey of Ophthalmology 2018

角膜移植術の発展
1905 (Zirm)
1st PKP◼

2005 (Price)
DSEK・DSAEK2006 (Melles)
DMEK

2013 (Kinoshita)
Cell Injection Therapy

Cell density(cells/mm2)

実質-0.4% / year : Normal> -1.5 / year : Fuchs

3000

水疱性角膜症0歳

Wiliam B. Exp Eye Res 2004
Survey of Ophthalmology 2018

ドナー不足・不十分な視機能回復・長期生着能・拒絶反応・コスト

2

2024/1/23

内皮移植の普及と角膜移植の現状
iEK

PKP

DSAEK

DMEK

1.3%

21.4%

67.9%

8.8%

2011年と2021年 DSAEK原疾患の変化
2011年

180

Others

160

FECD

2021年

FECD

LI

LI

13%

15%

8%
20%

PBK/ABKPBK/ABK

11%

3%

140

DMEK

9%

120

28%

DSAEK

100

19%
12%

iEK

40

failed graft (PKP)

15%

failed graft (PKP)

PKP

バプテスト眼科クリニック

others

20%

FECD

LI

PBK/ABK

glaucoma
relatedfailed graft(PKP)

failed graft(DSAEK)

others

2011

10

22

16

9

7

2

12

2021

9

12

16

21

8

20

22

20
199819992000200120022003200420052006200720082009201020112012201320142015201620172018201920202021

7%

others20%

0

failed graft(DSAEK)

failed graft(DSAEK)8060

glaucoma related

glaucoma related

16

角膜内皮細胞培養と細胞注入療法の開発

培養ヒト角膜内皮細胞亜集団の選別法の確立
ＣＤ抗原
CD24– /CD26– /CD44–/dull
CD105–/dull/CD166+ cells

相転移細胞

非増殖
ROCK阻害剤
Okumura. IOVS. 2009

形質転換

MSC馴化培地
Nakahara. PLoS One. 2013

ドナー角膜
1人分から
3 5=243人分

角膜内皮細胞増殖
細胞接着を促進アポトーシスを抑制

TGFβ阻害剤（5継代の場合）

Okumura. PLoS One. 2013

in vivo ヒト角膜内皮細胞に類似した目的細胞に設定
成熟分化型細胞
Hamuro J et al. IOVS (2016) PMID:27607421

亜集団の選択的増幅
Okumura, Koizumi, (Kinoshita)PLoS One. 8(2):e58000, 2013
Nakahara, Okumura, Koizumi, (Kinoshita) PLoS One. 23;8(7):e69009,2013

成熟培養角膜内皮細胞（SP）の比率と均質性が生着に影響する

Kinoshita S et al. N Eng J Med (2018) PMID:29539291

細胞注入後3年の角膜内皮スペキュラ画像（角膜中央部）

Figure 1

Group 1

CD24–, CD26–, CD44-/dull, CD105-/dull, CD133–, CD166+ cells

症例 1

LI-BK 症例 2
ECD: 859

FECD 症例 3
ECD: 1,238

FECD
ECD: 1,984

症例 12

FECD 症例 13
ECD: 2,765

LI-BK
ECD: 2,182

症例 4

PEX-BK 症例 5
ECD: <DL

FECD 症例 6
ECD: 1,035

LI-BK
ECD: 1,440

症例 15

LI-BK 症例 16
ECD: 3,423

PBK
ECD: 4,417

症例 7

FECD 症例 8
ECD: 1,258

症例 18

CHED
ECD: 3,083

症例 34

PBK
ECD: 3,155

症例 10

FECD 症例 11
ECD: 1,707

症例 32

LI-BK
ECD: 2,985

0.1%から76.3%

18Group 2

CD105

成熟細胞
ミトコンドリア依存性代謝経路

SC: <DL

SC: 0.013

SC: 0.011

CD44
品質と純度を向上させ、その均質性と同等性を確保

CD105

94.6%から99.2%

CD44
Ueno M, Kinoshita S, et al. Am J Ophthalmol 2022;237: 267– 277.

FECD 症例 9
ECD: 2,104

FECD
ECD: 746

IOS-BK
ECD: 1,476

ECD = 角膜内皮細胞密度（Endothelial cell density） (cells/mm2)
Ueno M, et al. Am J Ophthalmol (2022) PMID:34788595

3

2024/1/23

Figure 2

成熟培養角膜内皮細胞（SP）のが術後角膜内皮細胞密度に関係する

Corneal endothelial-like cells from allogenic ES/iPS cells(CECSi cells)• Transplantation of iPSC-derived corneal endothelial substitutes in a monkey corneal edema model.
Stem Cell Res. 2021;55:102497.(Hatou S, Sayano T, Higa K, Inagaki E, Okano Y, Sato Y, et al.)Ueno M, Kinoshita S, et al. Am J Ophthalmol 2022;237: 267– 277.

角膜の発生とiPS細胞からの分化誘導

Hatou S et al. JJO 2023

Biological characteristics of iPS induced corneal endothelial cells• Hexagonal confluent monolayer• Na, K-ATPase alpha 1 subunit expression (ATP1A1)

角膜上皮・水晶体上皮：表皮外胚葉
角膜内皮・実質：神経堤細胞• NR3C2 (mineralocorticoid receptor) expression

妊娠５－６W• tight junctions (ZO1)

90%以上の発現率• N-cadherin adherence junction formation• nuclear PITX2 expression

TGF beta, BMP, and Wnt
眼周囲神経堤細胞

Foxc1、Foxc2、
Lmx1b、Pax6、Pitx2、
RARβ、RARγ、RXRα、
Six3、Smad2

角膜再生医療の現状• 角膜上皮自家角膜上皮幹細胞（ネピック® ）自家口腔粘膜上皮細胞（オキュラル®・サクラシー®）

iPS由来角膜上皮細胞• 角膜内皮⚫ 僚眼を温存⚫ 両眼性を角膜上皮で再建⚫ 低い拒絶リスク治療

同種培養角膜内皮細胞注入療法（ビスノバ® ）iPS由来角膜内皮代替細胞(CLS001/Cellusion)

4VII. 参考資料

1. 平成 22 年 1 月 18 日付薬食機発 0118 第 1 号厚生労働省医薬食品局審査管理課医療機器審査管理室長通知
別添 4 「角膜上皮細胞シートに関する評価指標」
2. 平成 24 年 9 月 7 日付薬食発 0907 第 5 号厚生労働省医薬食品局長通知「ヒト（同種）iPS（様）細胞加工医薬品等の品質及び安全性の確保に関する指針」
3. 令和元年 6 月 27 日付薬生機審発 0627 第 1 号厚生労働省医薬・生活衛生局医療機器審査管理課長通知「ヒト細胞加工製品の未分化多能性幹細胞・形質転換細胞検出
試験、造腫瘍性試験及び遺伝的安定性評価に関する留意点」

【資料6】

薬食機発０１１８第１号
平成２２年１月１８日
各都道府県衛生主管部（局）長

殿

厚生労働省医薬食品局審査管理課
医療機器審査管理室長

次世代医療機器評価指標の公表について

厚生労働省では、医療ニーズが高く実用可能性のある次世代医療機器について、審査時に用いる技術評価指標等をあらかじめ作成し、公表することにより、製品開発の効率化及び承認審査の迅速化を図る目的で、検討分野を選定して評価指標を検討してきたところです。
今般、骨折整復支援装置、関節手術支援装置、重症心不全細胞治療用細胞シート及び角膜上皮細胞シートの評価を行うに当たって必要と考えられる資料、評価のポイント等を評価指標としてとりまとめましたので、下記に留意の上、製造販売承認申請に当たって参考とする
よう、貴管下関係業者に対しご周知いただきますよう御配慮願います。
なお、本通知の写しを独立行政法人医薬品医療機器総合機構理事長、日本医療機器産業連合会会長、米国医療機器・ＩＶＤ工業会会長及び欧州ビジネス協会医療機器委員会委員長あて送付することとしております。
記
１．

評価指標とは、承認申請資料の収集やその審査の迅速化等の観点から、製品の評価において着目すべき事項（評価項目）を示すものである。評価指標は、法的な基準という位置付けではなく、技術開発の著しい次世代医療機器を対象として現時点で考えられる評価項目を示したものであり、製品の特性に応じて、評価指標に示すもの以外の評価が必要である場合や評価指標に示す評価項目のうち適用しなくてもよい項目があり得ることに留意すること。

２．

個々の製品の承認申請に当たって必要な資料・データを収集する際は、評価指標に示す事項について予め検討するほか、可能な限り早期に独立行政法人医薬品医療機器総合機構の対面助言を活用することが望ましい。

（別添４）
角膜上皮細胞シートに関する評価指標

１．はじめにヒ ト 由 来 細 胞・組 織 を 加 工 し た 医 薬 品 又 は 医 療 機 器（ 以 下「 細 胞・組 織 加 工 医
薬 品 等 」 と い う 。） の 品 質 及 び 安 全 性 を 確 保 す る た め の 基 本 的 な 技 術 要 件 は 、 平
成 20 年 2 月 8 日 付 け 薬 食 発 第 0208003 号 厚 生 労 働 省 医 薬 食 品 局 長 通 知（ 以 下「 ヒト （ 自 己 ） 由 来 細 胞 ・ 組 織 加 工 医 薬 品 等 の 指 針 」 と い う 。） 及 び 平 成 20 年 9 月
12 日 付 け 薬 食 発 第 0912006 号 厚 生 労 働 省 医 薬 食 品 局 長 通 知（ 以 下「 ヒ ト（ 同 種 ）由 来 細 胞・組 織 加 工 医 薬 品 等 の 指 針 」と い う 。）に 定 め ら れ て い る と こ ろ で あ る 。
本 評 価 指 標 は 、ヒ ト 由 来 細 胞・組 織 加 工 医 薬 品 等 の う ち 特 に 角 膜 上 皮 障 害 等 の
治 療 を 目 的 と し て 適 用 さ れ る も の で あ っ て 細 胞 シ ー ト 状 の 製 品 に つ い て 、上 述 の
基本的な技術要件のうち当該製品特有の留意すべき事項を示すものである。
２．本評価指標の対象
本 評 価 指 標 は 、角 膜 上 皮 障 害 等 の 治 療 を 目 的 と し て 適 用 さ れ る 細 胞・組 織 加 工
医 薬 品 等 の う ち 特 に 細 胞 シ ー ト 状 の 製 品 に つ い て 、基 本 的 な 技 術 要 件 に 加 え て 品
質、有効性及び安全性の評価にあたって留意すべき事項を示したものである。
な お 、開 発 す る 細 胞 シ ー ト 製 品 が 医 療 機 器 に 該 当 す る か 判 断 し 難 い 場 合 は 、必要 に 応 じ 、厚 生 労 働 省 医 薬 食 品 局 審 査 管 理 課 医 療 機 器 審 査 管 理 室 に 相 談 す る こ と 。
３．本評価指標の位置づけ
本 評 価 指 標 は 、技 術 開 発 の 著 し い ヒ ト 由 来 細 胞・組 織 加 工 医 薬 品 等 を 対 象 と す
る も の で あ る こ と を 勘 案 し 、留 意 す べ き 事 項 を 網 羅 的 に 示 し た も の で は な く 、現時 点 で 考 え ら れ る 点 に つ い て 示 し て い る 。よ っ て 、今 後 の 更 な る 技 術 革 新 や 知 見の 集 積 等 を 踏 ま え 改 訂 さ れ る も の で あ り 、申 請 内 容 に 関 し て 拘 束 力 を 有 す る も のではない。
製 品 の 評 価 に あ た っ て は 、個 別 の 製 品 の 特 性 を 十 分 理 解 し た 上 で 、科 学 的 な 合
理性をもって柔軟に対応することが必要である。
な お 、本 評 価 指 標 の 他 、国 内 外 の そ の 他 の 関 連 ガ イ ド ラ イ ン を 参 考 に す る こ とも考慮すべきである。
４．用語の定義
本 評 価 指 標 に お け る 用 語 の 定 義 は ヒ ト（ 自 己 ）由 来 細 胞・組 織 加 工 医 薬 品 等 の指 針 及 び ヒ ト（ 同 種 ）由 来 細 胞・組 織 加 工 医 薬 品 等 の 指 針 の 定 義 に よ る 他 、以 下のとおりとする。
（ １ ）角 膜 上 皮：角 膜 は 表 面 か ら 、角 膜 上 皮 層 、角 膜 実 質 層 、角 膜 内 皮 層 の ３ 層構造をしている。角膜上皮層は４～５層の角膜上皮細胞から構成されている組織である。
（ ２ ）角 膜 上 皮 障 害：角 膜 輪 部 に 存 在 す る 角 膜 上 皮 幹 細 胞 が 、外 傷 や 疾 病 に よ って完全に消失したため、角膜表面が混濁した結膜組織に被覆された状態（角膜上皮幹細胞疲弊症）をいう。
（ ３ ）輪 部：角 膜 と 結 膜 の 境 界 部 位 を い う 。輪 部 の 上 皮 層 基 底 部 に は 角 膜 上 皮 の幹細胞が存在している。
（ ４ ）細 胞 シ ー ト：細 胞 同 士 、ま た は 細 胞 と 支 持 体 が 結 合 し て シ ー ト 状 の 形 態 を呈したものをいう。
（ ５ ）支 持 体：細 胞 を シ ー ト 状 に 形 成 す る た め の 足 場 と な る も の を い い 、移 植 ・
投与される細胞シート製品に含有されるか否かを問わない。なお、支持体の原料として生物由来の原材料が用いられる場合もある。
（ ６ ）バ リ ア 機 能：角 膜 上 皮 層 の よ う な 重 層 化 し て い る 上 皮 細 胞 層 で は 、表 層 細胞の細胞間がタイトジャンクションという接着構造で強固に結合して、異物や水などを自由に通さない構造となっている。この機能をバリア機能 という。
（ ７ ）細 隙 灯 顕 微 鏡（ ス リ ッ ト ラ ン プ ）検 査：角 膜 を 含 め た 眼 の 表 面 を 拡 大 し て観察する眼科臨床検査のひとつをいう。
５．評価に当たって留意すべき事項（１）製品の品質管理
細 胞 シ ー ト 製 品 の 品 質 管 理 に お け る 留 意 点 と し て 、例 え ば 以 下 に 挙 げ た 事 項を 含 め て 検 討 し 、製 品 の 特 性 に 応 じ て 適 切 に 品 質 管 理 項 目 に 反 映 す る こ と が 必要と考えられる。必要かつ適切であれば、別の試験項目、試験方法等の採用又は追加を検討すること。また、各項目について試験項目及び試験方法の妥当性を説明する必要がある。
な お 、移 植 に 供 す る 細 胞 シ ー ト 製 品 そ の も の の 評 価 が 困 難 な 場 合 は 、ス ペ ア
シ ー ト （ 移 植 枚 数 に 品 質 管 理 用 の シ ー ト も 加 え た 枚 数 を 製 造 し 、無 作 為 に 抜 き取ったシート）等による評価も考えられる。
①形状について位 相 差 顕 微 鏡 観 察 や 組 織 切 片 の 作 製 等 に よ り 、細 胞 シ ー ト の 形 状（ 面 積 、穴 ・欠 損 の 有 無 等 ）、 細 胞 の 重 層 化 の 程 度 等 を 確 認 す る 。

②構成細胞、細胞の特性等について
以下のような評価が考えられる。
・位 相 差 顕 微 鏡 観 察 等 に よ り 、上 皮 細 胞 様 の 細 胞 形 態 が 観 察 さ れ る こ と を 確
認・細胞の増殖性の確認
・細胞の生細胞率の確認
・各 種 細 胞 マ ー カ ー を 用 い た 、細 胞 シ ー ト 内 の 構 成 細 胞 の ポ ピ ュ レ ー シ ョ ン
及びその分布等の確認
・細 胞 シ ー ト の 作 製 に 当 た り 、フ ィ ー ダ ー 細 胞 を 使 用 す る 場 合 は 、細 胞 シ ート製品内への残存量の評価③バリア機能について
例えば、バリア機能との相関が報告されている適切なマーカーの発現解析、
細 胞 重 層 化 の 定 量 、 経 上 皮 電 気 抵 抗 値 （ TEER;Trans Epithelial Electrical
Resistance)の 測 定 等 に よ り 、細 胞 シ ー ト に 要 求 さ れ る 機 能 の 評 価 を 検 討 す る 。
④細胞シート製品の運搬について
細 胞 シ ー ト 製 品 を 運 搬 す る 場 合 に は 、運 搬 容 器 及 び 運 搬 手 順 （ 温 度 管 理 等 を含 む 。） 等 を 定 め 、 容 器 内 の 環 境 等 が 適 切 に 管 理 さ れ 、 製 品 の 品 質 、 有 効 性 及び 安 全 性 が 確 保 さ れ る こ と を 示 す こ と 。 そ の 際 、特 殊 な 機 能 を 有 す る 培 養 皿 を使用する場合はその特性を考慮すること。
例 え ば 、温 度 感 受 性 培 養 皿 の よ う に 細 胞 シ ー ト を 製 造 す る た め に 細 胞 と の 接
触 面 に 特 殊 処 理 を 施 し て い る 場 合 、当 該 培 養 皿 を 用 い て 製 造 さ れ た 細 胞 シ ー ト
製 品 は 、温 度 低 下 に よ り 細 胞 が 培 養 皿 か ら 脱 着 し て 細 胞 生 存 率 や 細 胞 機 能 が 低下する可能性があるため、輸送の際は温度管理が特に重要となる。
⑤支持体について羊 膜 や フ ィ ブ リ ン ゲ ル 等 の 支 持 体 を 用 い る 場 合 、必 要 に 応 じ て 規 格 を 設 定 し 、
支 持 体 が 目 的 と す る 機 能 を 有 す る こ と を 評 価 す る 必 要 が あ る 。ま た 、安 全 性（ 例
えば、感染症や異物反応等）について説明する必要がある。
（２）非臨床試験
妥 当 な 疾 患 動 物 モ デ ル と 、そ の モ デ ル 動 物 に 由 来 す る 原 材 料 を 用 い た 同 等 品
作 製 お よ び 品 質 保 証 技 術 が 確 立 さ れ て い る 場 合 に は 、可 能 な 限 り 、 モ デ ル 動 物
を 用 い た 非 臨 床 試 験 を 行 う こ と が 望 ま し い 。疾 患 モ デ ル 動 物 と し て は 、例 え ば 、ウサギ、イヌ、ブタ、サル等の中大型動物を用いた角膜上皮幹細胞疲弊症モデ
ル等が考えられる。用いた動物モデルの作製方法、試験デザイン、評価期間、評価方法等の妥当性について説明する必要がある。有効性の検討には、適切な対照群を設定し、統計学的手法を用いて評価することが望ましい。
検 査 項 目 と し て は 、 例 え ば 以 下 を 検 討 す る こ と が 考 え ら れ る が 、必 要 か つ 適切であれば別の試験項目及び試験方法の採用又は追加を検討すること。なお、各試験項目及び試験方法の妥当性を説明する必要がある。
①細隙灯顕微鏡検査による角膜の評価
細隙灯顕微鏡検査により、角膜の透明性、角膜上皮欠損の有無等角膜上皮の状態を評価すること。
眼 感 染 症 、同 種 移 植 の 場 合 の 拒 絶 反 応 等 の 有 害 事 象 の 有 無 、結 膜 組 織 や 血 管の 侵 入 の 程 度 及 び バ リ ア 機 能 の 維 持 等 を 確 認 す る こ と に よ り 、角 膜 表 面 が 目 的とする細胞・組織により被覆されていることを評価すること等が考えられる。
ま た 、 角 膜 の 透 明 性 、 角 膜 上 皮 障 害 等 の 評 価 に 当 た っ て は 、 例 え ば 、 Grade
分 け し 、ス コ ア 化 し て 評 価 を 行 う こ と が 考 え ら れ る が 、こ の 場 合 、ス コ ア 化 の妥当性について十分に合理的な説明が必要である。
②形態学的評価
移 植 後 の 角 膜 組 織 を 経 時 的 に 採 取 し 、 HE 染 色 、 免 疫 染 色 法 な ど に よ り 角 膜上皮の状態を評価する。血管浸入の有無、細胞シートの生着、角膜上皮の重層化の程度、角膜上皮を構成する細胞のポピュレーション及びその分布等を確 認 す る こ と が 考 え ら れ る 。（ 例 え ば 、線 維 芽 細 胞 、杯 細 胞 等 の 有 無 や 角 膜 表面が目的とする上皮細胞により被覆されていることを確認する等）（３）臨床試験（治験）治 験 実 施 計 画 書 （ 安 全 性 及 び 有 効 性 の 評 価 項 目 を 含 む 。） は 、 対 象 疾 患 、 目
的 と す る 効 能 及 び 効 果 、当 該 治 療 法 に 期 待 さ れ る 臨 床 上 の 位 置 付 け 等 に 応 じ て 、
非臨床データ等も踏まえて適切に計画されるべきである。

薬食発０９０７第５号
平成２４年９月７日
各都道府県知事 殿

厚生労働省医薬食品局長

ヒト（同種）iPS（様）細胞加工医薬品等の品質及び安全性の確保について

ヒト由来の細胞・組織を加工した医薬品又は医療機器の品質及び安全性を確保するための基本的な技術要件については、平成20年２月８日付け薬食発第020800
3号厚生労働省医薬食品局長通知「ヒト（自己）由来細胞や組織を加工した医薬品又は医療機器の品質及び安全性の確保について」の別添及び平成20年９月12日
付け薬食発第0912006号厚生労働省医薬食品局長通知「ヒト（同種）由来細胞や組織を加工した医薬品又は医療機器の品質及び安全性の確保について」の別添（以下、「平成20年２指針」という。）により通知したところである。
今般、ヒト由来の人工多能性幹細胞（iPS細胞）又は人工多能性幹細胞様細胞（iPS様細胞）のうち、同種由来iPS細胞又はiPS様細胞を加工した医薬品又は医療機器の品質及び安全性の確保のための基本的な技術要件については、平成20年
２指針に代えて、新たな指針を別添「ヒト（同種）iPS（様）細胞加工医薬品等の品質及び安全性の確保に関する指針」のとおりとりまとめたので、御了知の上、貴管内関係業者等が同種由来iPS細胞又はiPS様細胞を加工した医薬品又は医療機器を開発する際等に参考として利用できるよう周知願いたい。

ヒト（同種）iPS（様）細胞加工医薬品等の品質及び安全性の確保に関する指針
はじめに
１． 本指針は、ヒト由来の人工多能性幹細胞（iPS 細胞）又は人工多能性幹細胞様細胞（iPS 様細胞）のうち、同種由来 iPS 細胞又は iPS 様細胞（自己由来 iPS 細胞又は iPS様細胞を除く）を加工した医薬品又は医療機器(以下「ヒト(同種)iPS（様）細胞加工
医薬品等」という)の品質及び安全性の確保のための基本的な技術要件について定めるものである。しかしながら、ヒト iPS（様）細胞加工医薬品等は、ヒト体細胞より人為的に作製された各種 iPS（様）細胞を人為的に分化誘導し、得られた特定の細胞をそのまま利用、あるいはさらに加工することにより製造されるため、その製造方法、中間製品や目的細胞の種類及び特性、臨床上の適用法は多種多様であり、また、本分野における科学的進歩や経験の蓄積は日進月歩である。本指針を一律に適用したり、本指針の内容が必要事項すべてを包含しているとみなしたりすることが必ずしも適切でない場合もある。したがって、個々の医薬品等についての試験の実施や評価に際しては本指針の目的を踏まえ、その時点の学問の進歩を反映した合理的根拠に基づ
き、ケース・バイ・ケースで柔軟に対応することが必要であること。
２．

薬事戦略相談あるいは治験相談におけるヒト iPS（様）細胞加工医薬品等の治験を開始するに当たっての基本的留意点は、当該製品にヒトへの適用により支障となる品
質及び安全性上の明らかな問題が存在するか否か、臨床で得られた知見との関係性を照合できる程度に品質特性が把握され、その一定範囲の恒常性が確保されているか否かを確認することにある。その際、明らかに想定される製品のリスクを現在の学問・技術を駆使して排除し、その科学的妥当性を明らかにした上で、なお残る「未知のリスク」と、重篤で生命を脅かす疾患、身体の機能を著しく損なう疾患、身体の機能や形態を一定程度損なうことにより QOL を著しく損なう疾患などに罹患し、従来の治療法では限界があり、克服できない患者が「新たな治療機会を失うことにより被るかもしれないリスク」とのリスクの大小を勘案し、かつ、これらすべての情報を開示した
上で患者の自己決定権に委ねるという視点を持つこと、すなわち、リスク・期待されるベネフィットの情報を開示した上で、治験に入るかどうかの意思決定は患者が行うという視点を入れて評価することも重要である。したがって、治験開始の場合、その届出に当たって添付するべき資料について本指針に示された要件や内容をすべて充たすことを必ずしも求めている訳ではない。製造販売承認申請時における品質及び安全性の確保のための資料は治験の進行とともに本指針に沿って充実整備されることを前提に、治験開始時点でその趣旨に適う条件を充たし、合理的に作成された適切な資料を提出すること。
また、治験開始に必要とされる資料の範囲及び程度については、当該製品の由来、対象疾患、対象患者、適用部位、適用方法及び加工方法等により異なり、本指針では具体的に明らかでないことも少なくないので、個別に独立行政法人医薬品医療機器総合機構に相談することが望ましい。

-1-

３．

本指針に記述された事項、試験方法、基準その他の技術要件は、それぞれの目的に適う内容と程度をもとに考慮、選択、適用、及び評価されるべきことを意図しており、必ずしも常に同一（最高）水準での解釈、運用を求めている訳ではない。こ
の趣旨を踏まえ、申請者は、考慮した背景、選択、適用、及び評価した内容と程度がそれぞれの目的に相応しく、科学的合理性からみて妥当であることを明らかにす
ること。

-2-

目次

第１章 総則･････････････････････････････････････････････････････････････････5
第１ 目的･･･････････････････････････････････････････････････････････････････5
第２ 定義･･･････････････････････････････････････････････････････････････････5
第２章 製造方法･････････････････････････････････････････････････････････････6
第１ 原材料及び製造関連物質･････････････････････････････････････････････････6
１ iPS（様）細胞作成の原材料となるヒト体細胞･･････････････････････････････6(1) 起源及び由来、選択理由･･･････････････････････････････････････････････6(2) 原材料となる細胞・組織の特性と適格性･････････････････････････････････6(3) ドナーに関する記録･･･････････････････････････････････････････････････7(4) 細胞・組織の採取・保存・運搬･････････････････････････････････････････7
２ 目的とする細胞・組織以外の原材料及び製造関連物質･･･････････････････････8(1) 細胞の培養を行う場合･････････････････････････････････････････････････8(2) 非細胞成分と組み合わせる場合････････････････････････････････････････10(3) 細胞に遺伝子工学的改変を加える場合･･････････････････････････････････10(4) 細胞にタンパク質を導入する場合･･････････････････････････････････････11(5) 薬剤等の処理により細胞の初期化、脱分化又は分化誘導を行う場合････････11(6) 物理的方法により細胞の初期化、脱分化又は分化誘導を行う場合･･････････12(7) コンビネーションにより細胞の初期化、脱分化又は分化誘導を行う場合･･12
３ ヒト iPS（様）細胞の樹立･･･････････････････････････････････････････････12
４ ヒト iPS（様）細胞株の保存及び運搬方法･････････････････････････････････12
５ 記録の作成及び保管方法･･･････････････････････････････････････････････12
第２ 製造工程･･････････････････････････････････････････････････････････････12
１ ロット構成の有無とロットの規定････････････････････････････････････････13
２ 製造方法･･････････････････････････････････････････････････････････････13(1) 受入検査････････････････････････････････････････････････････････････13(2) 細菌、真菌及びウイルス等の不活化・除去･･････････････････････････････13(3) 組織の細切、細胞の分離、特定細胞の単離等････････････････････････････13(4) ヒト iPS（様）細胞株の樹立･･･････････････････････････････････････････13(5) ヒト iPS（様）細胞由来の中間細胞株の樹立･････････････････････････････13(6) 最終製品の構成要素となる細胞の作成･････････････････････････････････14(7) 細胞のバンク化･･････････････････････････････････････････････････････14(8) 製造工程中の取り違え及びクロスコンタミネーション防止対策････････････14
３ 最終製品の構成要素となる細胞の特性解析････････････････････････････････14
４ 最終製品の形態、包装･･････････････････････････････････････････････････14
５ 製品の保存及び運搬････････････････････････････････････････････････････15
６ 製造方法の恒常性･･････････････････････････････････････････････････････15
７ 製造方法の変更････････････････････････････････････････････････････････15-3-

第３ 最終製品の品質管理････････････････････････････････････････････････････15
１ 総論･･････････････････････････････････････････････････････････････････15
２ 最終製品の品質管理法･･････････････････････････････････････････････････16(1) 細胞数並びに生存率･･････････････････････････････････････････････････16(2) 確認試験････････････････････････････････････････････････････････････16(3) 細胞の純度試験･･････････････････････････････････････････････････････16(4) 細胞由来の目的外生理活性物質に関する試験････････････････････････････16(5) 製造工程由来不純物試験･･････････････････････････････････････････････16(6) 無菌試験及びマイコプラズマ否定試験･･････････････････････････････････17(7) エンドトキシン試験･･････････････････････････････････････････････････17(8) ウイルス試験････････････････････････････････････････････････････････17(9) 効能試験････････････････････････････････････････････････････････････17(10) 力価試験････････････････････････････････････････････････････････････17(11) 力学的適合性試験････････････････････････････････････････････････････18
第３章 ヒト iPS（様）細胞加工医薬品等の安定性･･･････････････････････････････18
第４章 ヒト iPS（様）細胞加工医薬品等の非臨床安全性試験･････････････････････18
第５章 ヒト iPS（様）細胞加工医薬品等の効力又は性能を裏付ける試験･･･････････20
第６章 ヒト iPS（様）細胞加工医薬品等の体内動態･････････････････････････････20
第７章 臨床試験････････････････････････････････････････････････････････････21

-4-

第１章
第１

総則

目的
本指針は、ヒト(同種) iPS（様）細胞加工医薬品等の品質及び安全性の確保のための基本的な技術要件について定めるものである。

第２定義
本指針における用語の定義は以下のとおりとする。
１ 「ヒト人工多能性幹細胞（iPS 細胞）」とは、ヒト体細胞を遺伝子導入・タンパク質導入・薬剤処理等により人為的に初期化して得られる細胞又は当該細胞の分裂により生ずる細胞であって、内胚葉、中胚葉及び外胚葉の細胞に分化する性質を有し、かつ、自己複製能力を維持しているもの又はそれに類する能力を有することが推定されるものをいう。
２ 「ヒト人工多能性幹細胞様細胞（iPS 様細胞）」とは、ヒト体細胞を、遺伝子導入
・タンパク質導入・薬剤処理等により人為的に脱分化して得られる細胞又は当該細胞の分裂により生ずる細胞であって、少なくとも内胚葉、中胚葉又は外胚葉の一部の細胞に分化する性質を有し、自己複製能を維持しているもの又はそれに類する能力を有することが推定されるものを指す。
３ 「細胞・組織の加工」とは、疾患の治療や組織の修復又は再建を目的として、細胞・組織の人為的な増殖・分化、細胞の株化、細胞の活性化等を目的とした薬剤処理、生物学的特性改変、非細胞成分との組み合わせ又は遺伝子工学的改変等を施すことをいう。
組織の分離、組織の細切、細胞の分離、特定細胞の単離、抗生物質による処理、洗浄、ガンマ線等による滅菌、冷凍、解凍等は加工とみなさない。
４ 「製造」とは、加工に加え、組織の分離、組織の細切、細胞の分離、特定細胞の単離、抗生物質による処理、洗浄、ガンマ線等による滅菌、冷凍、解凍等、当該細胞・組織の本来の性質を改変しない操作を含む行為で、最終製品であるヒト(同種)iPS（様）細胞加工医薬品等を出荷するまでに行う行為をいう。
５ 「表現型」とは、ある一定の環境条件のもとで、ある遺伝子によって表現される形
態学的及び生理学的な性質をいう。
６ 「HLA タイピング」とは、ヒトの主要組織適合性抗原型である HLA(ヒト白血球抗原)のタイプを特定することをいう。
７ 「ドナー」とは、ヒト(同種) iPS（様）細胞加工医薬品等の原料となる体細胞を提供するヒトをいう。
８ 「遺伝子導入構成体」とは、目的遺伝子を標的細胞に導入するための運搬体、目的
遺伝子及びその機能発現に必要な要素をコードする塩基配列等から構成されるものをいう。
９ 「タンパク質導入体」とは、目的タンパク質を標的細胞に導入するための薬剤及び目的タンパク質等から構成されるものをいう。

-5-

第２章 製造方法
製造方法について、下記の事項に留意し、必要な情報を明らかにすること。これらの情報等は、最終製品の品質や安全性等の確保に資するとともに、品質の恒常性を製造方
法面から保証するために重要なものである。しかし、品質・安全性等の確保や品質恒常性保証は、製造方法全体で相互補完的方策により達成され、その方策が合理的で合目的
性に叶うことが最も肝要である。したがって、最終製品や中間製品における品質試験や管理あるいは製造過程における管理において、品質・安全性等の確保や品質恒常性保証という目的が達成されるのであれば、その科学的妥当性を明示した上で下記の措置や情報の一部を省略しても差し支えない。
第１ 原材料及び製造関連物質
１ iPS（様）細胞作製の原材料となるヒト体細胞(1) 起源及び由来、選択理由
ヒト iPS（様）細胞株の樹立に使用する体細胞の起源及び由来について説明し、当該体細胞を選択した理由を明らかにすること。
(2) 原材料となる細胞・組織の特性と適格性① 生物学的構造・機能の特徴と選択理由
原材料として用いられる細胞・組織について、その生物学的構造・機能の特徴を、
例えば、形態学的特徴、増殖特性、生化学的指標、免疫学的指標、特徴的産生物質、HLA タイピング、その他適切な遺伝型又は表現型の指標から適宜選択して示し、当該体細胞を原材料として選択した理由を説明すること。
これらの検討結果から原材料となる体細胞を新たに調製する際に選択すべき重要細胞特性指標を明らかにしておくこと。検討に際しては、検体の量的制限や技術的限界もあり、可能な範囲で考慮すれば良い。
② ドナーの選択基準、適格性
ドナーの選択が倫理的に適切に行われ、かつ適切な手続きで行われたことを示す
こと。また、年齢、性別、民族学的特徴、遺伝的特徴、病歴、健康状態、採取細胞・組織を介して感染する可能性がある各種感染症に関する検査項目、免疫適合性等を考慮して、選択基準、適格性基準を定め、その妥当性を明らかにすること。ドナーのゲノム・遺伝子解析を行う場合は、「ヒトゲノム・遺伝子解析研究に関する倫理指針」（平成 16 年文部科学省・厚生労働省・経済産業省告示第 1 号）に従うこと。
感染症に関連しては、特に B 型肝炎(HBV)、C 型肝炎(HCV)、ヒト免疫不全ウイルス(HIV)感染症、成人 T 細胞白血病(HTLV)、パルボウイルス B19 感染症については、問診及び検査(血清学的試験や核酸増幅法等)により否定すること。また、サイトメ
ガロウイルス感染、EB ウイルス感染及びウエストナイルウイルス感染については
必要に応じて検査により否定すること。
この他、次に掲げるものについては既往歴の聴取、問診等を行うとともに、輸血、移植医療を受けた経験の有無等からドナーとしての適格性を判断すること。
・梅毒トレポネーマ、クラミジア、淋菌、結核菌等の細菌による感染症-6-

・敗血症及びその疑い・悪性腫瘍
・重篤な代謝及び内分泌疾患
・膠原病及び血液疾患
・肝疾患
・伝達性海綿状脳症及びその疑い並びにその他の認知症
・特定の遺伝性疾患や家族歴
なお、特定の遺伝的特徴や各種感染症に関する調査等で iPS（様）細胞から分化が進んだ細胞の段階（中間製品やセル・バンク）で行うことが可能で、かつ科学的合理性からみてより適切な項目については、その妥当性を明示した上で、分化細胞の段階での検討に委ねてもよい。
(3) ドナーに関する記録
原材料となる体細胞について、安全性を確保するために必要な情報が確認できるよう、ドナーに関する記録が整備、保管されていること。また、その具体的方策を示すこと。なお、試験的検体のドナー及び患者のそれぞれについて、それぞれの細胞の使用目的に応じた情報の整備及び保管方策でよい。
(4) 細胞・組織の採取・保存・運搬① 採取者及び採取医療機関等の適格性
細胞・組織の採取者及び採取医療機関等に求めるべき技術的要件について、明らかにすること。
② 採取部位及び採取方法の妥当性
細胞・組織の採取部位の選定基準及び採取方法を示し、これらが科学的及び倫理的に適切に選択されたものであることを明らかにすること。細胞・組織の採取方法については、用いられる器具及び薬剤、微生物汚染防止、取り違えやクロスコンタ
ミネーション防止のための方策等を具体的に示すこと。
③ ドナーに対する説明及び同意
細胞・組織のドナーに対する説明及び同意の内容を、臨床応用も含めて規定すること。
④ ドナーの個人情報の保護
ドナーの個人情報の保護方策について具体的に規定すること。
⑤ ドナーの安全性確保のための試験検査
細胞・組織採取時にドナーの安全性確保のために採取部位の状態の確認など試験検査を行わなければならない場合には、その内容、検査結果等に問題があった場合の対処法について具体的に規定すること。
⑥ 保存方法及び取り違え防止策
採取した体細胞を一定期間保存する必要がある場合には、保存条件や保存期間及びその設定の妥当性について明らかにすること。また、取り違えを避けるための手
段や手順等について具体的に説明すること。

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⑦ 運搬方法
採取した細胞・組織や iPS（様）細胞作製原料となる体細胞を運搬する必要がある場合には、運搬容器、運搬手順(温度管理等を含む。)を定め、その妥当性について明らかにすること。
⑧ 記録の作成及び保管方法①～⑦に関する事項について、実施の記録を文書で作成し、適切に保管する方法について明らかにすること。
２

目的とする細胞・組織以外の原材料及び製造関連物質並びに製造関連事項
目的とする細胞・組織以外の原材料及び製造関連物質並びに製造関連事項を明らかにし、その適格性を示すとともに、必要に応じて規格を設定し、適切な品質管理を行うことが必要である。
生物由来製品又は特定生物由来製品を原材料として使用する場合は、その使用量を必要最小限とし、「生物由来原料基準」(平成 15 年厚生労働省告示第 210 号)をはじめとする関連法令及び通知を遵守すること。特に、ウイルス不活化及び除去に関する情報を十分に評価する必要があるほか、遡及調査等を確保する方策についても明らかにすること。
なお、この項に記載された技術要件は、iPS（様）細胞作製の原材料となるヒト体細胞から iPS（様）細胞への初期化や脱分化及び iPS（様）細胞から最終製品に至る
分化誘導過程において該当する場合に留意されるべき事項である。
(1) 細胞の培養を行う場合① 培地、添加成分(血清、成長因子及び抗生物質等)及び細胞の処理に用いる試薬等のすべての成分等についてその適格性を明らかにし、必要に応じて規格を設定すること。各成分等の適格性の判定及び規格の設定に当たっては、最終製品の適用経路等を考慮すること。
② 培地成分については、以下の点に留意すること。
ア 培地に使用する成分及び水は、可能な範囲で医薬品又は医薬品原料に相当する基準で品質管理されている生物学的純度の高い品質のものを使用すること。
イ 培地に使用する成分は主成分のみでなく使用するすべての成分について明らかにし、選択理由及び必要に応じて品質管理法等を明確にすること。ただし、培地の構成成分が周知のもので、市販品等が一般的に使用されている DMEM、MCDB、
HAM、RPMI のような培地は 1 つのものと考えてよい。
ウ すべての成分を含有した培地の最終品については、無菌性及び目的とした培養に適していることを判定するための性能試験を実施する必要がある。その他、工程管理上必要と思われる試験項目を規格として設定し、適切な品質管理を行う必要がある。
③ 異種血清及び異種もしくは同種の血清に由来する成分については、細胞活性化又は増殖等の加工に必須でなければ使用しないこと。特に繰り返して使用する可能性のある製品では可能な限り使用を避けるよう検討すること。血清等の使用が避けられない場合には、以下の点を考慮し、血清等からの細菌、真菌、ウイルス及び異常プ-8-リオン等の混入・伝播を防止するとともに、最終製品から可能な限り除去するよう処理方法等を検討すること。
ア 血清等の由来を明確にすること。
イ 牛海綿状脳症発生地域からの血清を極力避ける等感染症リスクの低減に努めること。
ウ 由来動物種に特異的なウイルスやマイコプラズマに関する適切な否定試験を行い、ウイルス等に汚染されていないことを確認した上で使用すること。
エ 細胞の活性化、増殖に影響を与えない範囲で細菌、真菌及びウイルス等に対する適切な不活化処理及び除去処理を行う。例えば、潜在的なウイルス混入の危険性を避けるために、必要に応じて加熱処理、フィルター処理、放射線処理又は紫外線処理等を組み合わせて行うこと。
オ 培養細胞でのウイルス感染のモニター、患者レベルでのウイルス性疾患の発症に対するモニター及び異種血清成分に対する抗体産生等の調査のために、使用した血清の一部を保管すること。
④ フィーダー細胞を使用する場合には、平成 12 年 7 月 14 日付け医薬審第 873 号通知
厚生労働省医薬食品局審査管理課長通知「生物薬品（バイオテクノロジー応用医薬品／生物起源由来医薬品）製造用細胞基剤の由来、調製及び特性解析」、平成 14
年 7 月 9 日付け医政研発第 0709001 号厚生労働省医政局研究開発振興課長通知「異種移植の実施に伴う公衆衛生上の感染症問題に関する指針」及び平成 16 年 7 月 2
日付医政研発第 0702001 号厚生労働省医政局研究開発振興課長通知「「異種移植の実施に伴う公衆衛生上の感染症問題に関する指針」に基づく 3T3J2 株及び 3T3NIH
株をフィーダー細胞として利用する上皮系の再生医療への指針」を参考にして品質評価を行い、フィーダー細胞からの細菌、真菌、ウイルス、異常プリオン等の混入・伝播を防止する策を講じるとともに、使用時の分裂能不活化方法及び細胞密度等の条件について明らかにすること。ただし、例えば既に臨床使用されているヒト細胞・組織製品の製造に使用され、その特性や微生物学的安全性等について評価が定まっているフィーダー細胞と同一の細胞を利用する場合には、その妥当性を示すことによってウイルス否定試験等、試験の一部を省略することができる可能性がある。
⑤ 抗生物質の使用は極力避けるべきである。ただし製造初期の工程において抗生物質の使用が不可欠と考えられる場合には、その後の工程で可能な限り漸減を図るほか、その科学的理由、最終製品での推定残存量、患者に及ぼす影響などの面から妥当性を説明すること。なお、抗生物質を使用する場合でも十分に除去されることが立証される場合には、その使用を妨げるものではない。一方、原則として、用いる抗生物質に過敏症の既往歴のある患者の場合には、本治療を適応すべきではない。
やむを得ず適用する際には十分な注意を払うと同時に、患者からインフォームド・
コンセントを得る必要がある。
⑥ 成長因子を用いる場合には、細胞培養特性の再現性を保証するために、例えば純度及び力価に関する規格を設定する等適切な品質管理法を示すこと。
⑦ 最終製品に含有する可能性のある培地成分や操作のために用いられたその他の成-9-分等については、生体に悪影響を及ぼさないものを選択すること。
⑧ フィーダー細胞として異種動物由来の細胞を用いる場合には、異種動物由来の感染症のリスクの観点から安全性を確保すること。
(2) 非細胞成分と組み合わせる場合① 細胞以外の原材料の品質及び安全性について細胞とともに最終製品の一部を構成する非細胞の原材料(マトリックス、医療材
料、スキャフォールド、支持膜、ファイバー及びビーズ等)がある場合には、その品質及び安全性に関する知見について明らかにすること。
当該原材料の種類と特性、最終製品における形態・機能及び想定される臨床適応の観点から見た品質、安全性及び有効性評価との関連を勘案して、適切な情報を提供すること。生体吸収性材料を用いる場合には、分解生成物に関して必要な試験を実施すること。
なお、必要な試験等については、平成 15 年 2 月 13 日付け医薬審発第 0213001
号厚生労働省医薬食品局審査管理課長通知「医療用具の製造(輸入)承認申請に必要な生物学的試験の基本的考え方について」等を参照し、試験結果及び当該原材料を使用することの妥当性を示すこと。文献からの知見、情報を合理的に活用すること。
② 目的とする細胞との相互作用について
最終製品中又は中間製品中の細胞との相互作用に関し、以下の事項について、確認方法及び確認結果を示すこと。
ア 非細胞成分が、想定される臨床適応に必要な最終製品中又は中間製品中の細胞の機能、生育能力、活性及び安定性に悪影響を与えないこと。
イ 非細胞成分との相互作用によって起こり得る、最終製品中又は中間製品中の細胞の変異、形質転換及び脱分化等を考慮し、その影響を可能な範囲で評価すること。
ウ 想定される臨床適応において期待される非細胞成分の性質が、最終製品中又は中間製品中の細胞との相互作用によって損なわれないこと。
③ 細胞と適用部位を隔離する目的で非細胞成分を使用する場合
非細胞成分を細胞と適用部位を隔離する目的で使用する場合、下記の項目を参考に効果、安全性を確認すること。
ア 免疫隔離が目的の場合、その程度
イ 最終製品中の細胞由来の目的生理活性物質の膜透過キネティクスと薬理効果
ウ 栄養成分及び排泄物の拡散
エ 非細胞成分が適用部位周辺に及ぼす影響
オ 目的細胞由来の目的生理活性物質の薬理効果に期待し、かつ目的細胞や未分化細胞と適用部位との隔離を目的する場合、非細胞成分の崩壊等により細胞等が漏出しないこと。
(3) 細胞に遺伝子工学的改変を加える場合
細胞に遺伝子を導入する場合は、次に掲げる事項に関する詳細を示すこと。
① 目的遺伝子の構造、由来、入手方法、クローニング方法並びにセル・バンクの調製方法、管理方法及び更新方法等に関する情報- 10 -

② 導入遺伝子の性質③ 目的遺伝子産物の構造、生物活性及び性質④ 遺伝子導入構成体を作製するために必要なすべての原材料、性質及び手順(遺伝子導入法並びに遺伝子導入用ベクターの由来、性質及び入手方法等)⑤ 遺伝子導入構成体の構造や特性⑥ ベクターや遺伝子導入構成体を作製するための細胞やウイルスのバンク化及びバンクの管理方法
遺伝子導入細胞の製造方法については、平成 7 年 11 月 15 日付け薬発第 1062 号厚生省薬務局長通知「遺伝子治療用医薬品の品質及び安全性の確保に関する指針について」(以下、「遺伝子治療用医薬品指針」という。)の別添「遺伝子治療用医薬品の品
質及び安全性の確保に関する指針」第 2 章等を参照すること。また、同通知の別記に準じて設定の妥当性等を明らかにすること。
なお、遺伝子組換え生物等の使用等の規制による生物の多様性の確保に関する法律(平成 15 年法律第 97 号)に基づき、「ヒトの細胞等」若しくは「分化する能力を有す
る、又は分化した細胞等であって、自然条件において個体に成育しないもの」以外の細胞、「ウイルス」及び「ウイロイド」に対して遺伝子工学的改変を加える場合には、別途手続きが必要となるので留意すること。
上記の記述にかかわらず、最新の知見に基づき、細胞に導入される遺伝子が、化学的にも、機能的にも最終製品の一部を構成せず、製造工程中の試薬として使用されると判断された場合は、使用の目的に適う品質及び安全性が確保されていることを明らかにすることでよい。
(4) 細胞にタンパク質を導入する場合
細胞にタンパク質を導入する場合は、次に掲げる事項に関する詳細を示すこと。
① 導入タンパク質の構造、由来及び生物活性、物理化学的性質等の品質特性② 導入タンパク質の入手方法、製造方法、品質管理方法及び更新方法等に関する情報③ 導入タンパク質の細胞への導入方法④ タンパク質導入のために使用される化学物質等については、その構造及び生物活
性、物理化学的性質等の品質特性⑤ タンパク質導入体を作製する場合にはその製造方法、品質管理方法及び更新方法等に関する情報⑥ 導入タンパク質を作製するための細胞のバンク化及びバンクの管理方法
上記の記述にかかわらず、細胞に導入されるタンパク質が、化学的にも、機能的にも最終製品の一部を構成せず、製造工程中の試薬として使用される場合は、使用の目的に適う品質及び安全性が確保されていることを明らかにすることでよい。
(5) 薬剤等の処理により細胞の初期化、脱分化又は分化誘導を行う場合
薬剤等の処理により細胞の初期化、脱分化又は分化誘導を行う場合は、次に掲げる事項に関する詳細を示すこと。
① 目的薬剤等の構造、由来及び生物活性、物理化学的性質等の品質特性② 目的薬剤等の入手方法、製造方法、品質管理方法及び更新方法等に関する情報- 11 -

③ 目的薬剤等による細胞処理の方法(6) 物理的方法により細胞の初期化、脱分化又は分化誘導を行う場合
物理的方法により細胞の初期化、脱分化又は分化誘導を行う場合は、その方法の詳細を示すこと。
(7) コンビネーションにより細胞の初期化、脱分化又は分化誘導を行う場合
遺伝子工学的改変、タンパク質導入、薬剤処理及び物理的方法のうち、複数の方法のコンビネーションにより細胞の初期化、脱分化又は分化誘導を行う場合は、その方法の詳細を示すこと。
３

ヒト iPS（様）細胞株の樹立
ヒト iPS（様）細胞株の樹立に当たっては、ドナーの遺伝的背景を可能な範囲で理解したうえで樹立すること。原材料となる体細胞から iPS（様）細胞株樹立までの方法（ヒト体細胞を得るための方法、体細胞の分離・培養、体細胞の初期化/脱分化、初期化/脱分化細胞の分離及び株化の方法、ヒト iPS（様）細胞株樹立までの各段階での培地、培養条件、培養期間及び収率等）を明確にし、可能な範囲でその妥当性を明らかにすること。
ヒト iPS（様）細胞株の品質の均質性及び安定性を保持するため、各種細胞特性指標(例えば細胞純度、形態学的評価、HLA タイピング、表現型特異的マーカー、核型、DNA フィンガープリンティング、細胞増殖特性、多分化能など)のうちから重要細胞特性指標を同定してその基準を設定するとともに、設定された基準による品質を維持
したまま増殖が可能な継代数又は分裂回数を示すこと。

４

ヒト iPS（様）細胞株の保存及び運搬方法
ヒト iPS（様）細胞株について、保存・流通期間及び保存形態を十分考慮して、細胞の生存率及び力価等に基づく適切な安定性試験を実施し、貯法及び有効期限を設定し、その妥当性を明らかにすること。特に凍結保管及び解凍を行う場合には、凍結及び解凍操作による細胞株の安定性や規格への影響がないかを確認すること。また、必要に応じて標準的な保存期間を超える長期保存についても検討し、安定性の限界を可能な範囲で確認すること。ただし、細胞株を樹立後直ちに使用するような場合はこの限りではない。
また、ヒト iPS（様）細胞株を運搬する場合には、運搬容器及び運搬手順(温度管理等を含む)等を定め、その妥当性について明らかにすること。

５

記録の作成及び保管方法
２～４に関する事項について、実施の記録を文書で作成し、適切に保管する方法について明らかにすること。

第２

製造工程
ヒト iPS（様）細胞加工医薬品等の製造に当たっては、製造方法を明確にし、可能な範囲でその妥当性を以下の項目で検証し、品質の一定性を保持すること。

- 12 -

１

ロット構成の有無とロットの規定
最終製品及び中間製品がロットを構成するか否かを明らかにすること。ロットを構成する場合には、ロットの内容について規定しておくこと。
２ 製造方法
原材料となる細胞・組織や体細胞の受け入れからヒト iPS（様）細胞株の樹立及び分化段階の進んだ細胞を経て最終製品に至る製造の方法の概要を示すとともに、具体的な処理内容及び必要な工程管理、品質管理の内容を明らかにすること。
(1) 受入検査
原材料となる細胞・組織や体細胞、ヒト iPS（様）細胞株について、細胞・組織の種類や使用目的に応じて実施する受入のための試験検査の項目(例えば、目視検
査、顕微鏡検査、採取収率、生存率、細胞の特性解析及び微生物試験等)と各項目の判定基準を設定すること。治験開始前段階にあっては、それまでに得られた試験
検体での実測値を提示し、これらを踏まえた暫定値を示すこと。
(2) 細菌、真菌及びウイルス等の不活化・除去
原材料となる細胞・組織、ヒト体細胞あるいはヒト iPS（様）細胞株について、その細胞生存率や表現型、遺伝形質及び特有の機能その他の特性及び品質に影響を及ぼさない範囲で、必要かつ可能な場合は細菌、真菌及びウイルス等を不活化又は除去する処理を行うこと。当該処理に関する方策と評価方法について明らかにすること。
(3) 組織の細切、細胞の分離、特定細胞の単離等採取した細胞・組織から製品を製造する初期の過程で行われる組織の細切、iPS（様）細胞を作製するための体細胞の分離、特定体細胞の単離及びそれらの洗浄等の方法を明らかにすること。特定体細胞の単離を行う場合には、その確認方法を設定すること。
(4) ヒト iPS（様）細胞株の樹立
ヒト iPS（様）細胞株の樹立に当たっては、ドナーの遺伝的背景を可能な範囲で理解したうえで樹立すること。原材料となる体細胞から iPS（様）細胞株樹立までの方法を明確にし、可能な範囲でその妥当性を明らかにすること。また、重要細胞特性指標を同定してその基準を設定するとともに、設定された基準による品質を維持したまま増殖が可能な継代数又は分裂回数を示すこと（第２章第１の３を参照）。
(5) ヒト iPS（様）細胞由来の中間細胞株の樹立
中間製品としての細胞株（中間細胞株）を樹立することが、安全な最終目的製品を安定的に製造する上で重要でむしろ科学的に合理的な場合が考えられる。そのような方策を選択した場合は、その利点と妥当性を説明しておくこと。別の表現型を示す細胞株を段階的に樹立する際は、それぞれの細胞株樹立までの方法（分化誘導
方法、目的とする細胞の分離・培養及び株化の方法、細胞株樹立までの各段階での培地、培養条件、培養期間及び収率等）を明確にし、可能な範囲でその妥当性を明らかにすること。
中間細胞株の品質の均質性及び安定性を保持するため、各種細胞特性解析指標(例えば細胞純度、形態学的評価、表現型特異的マーカー、核型、細胞増殖特性、- 13 -

分化能など)のうちから重要細胞特性指標を同定してその基準を設定するとともに、設定された基準による品質を維持したまま増殖が可能な継代数又は分裂回数を示すこと。検討に際しては、細胞の量的制限や技術的限界もあり、可能な範囲で考慮すれば良い。
なお、このように樹立した中間細胞株をバンク化して活用する場合も考えられるが、その際は、(7)を参照すること。
(6) 最終製品の構成要素となる細胞の作製
ヒト iPS（様）細胞株から直接、あるいはヒト iPS（様）細胞由来中間細胞株を経て、最終製品の構成要素となる細胞を作製する方法（分化誘導方法、目的とする細胞の分離・培養の方法、培養の各段階での培地、培養条件、培養期間及び収率等）
を明確にし、可能な範囲でその妥当性を明らかにすること。
(7) 細胞のバンク化
ヒト iPS（様）細胞加工医薬品等の製造のいずれかの過程で、細胞をバンク化す
る場合には、その理由、セル・バンクの作製方法及びセル・バンクの特性解析、保存・維持・管理方法・更新方法その他の各作業工程や試験に関する手順等について
詳細を明らかにし、妥当性を示すこと。平成 12 年 7 月 14 日付け医薬審第 873 号厚生省医薬安全局審査管理課長通知「生物薬品(バイオテクノロジー応用医薬品／生物起源由来医薬品)製造用細胞基剤の由来、調製及び特性解析について」等を参考とすること。ただし、より上流の過程で評価されていることに起因する正当な理由により検討事項の一部を省略することは差し支えない。
(8) 製造工程中の取り違え及びクロスコンタミネーション防止対策
ヒト iPS（様）細胞加工医薬品等の製造にあたっては、製造工程中の取り違え及びクロスコンタミネーションの防止が重要であり、工程管理における防止対策を明らかにすること。
３

４

最終製品の構成要素となる細胞の特性解析
最終製品の構成要素となる細胞については、例えば、未分化細胞の混入や目的外の細胞の混入を規定するための細胞純度をはじめとして、細胞生存率、形態学的特徴、
細胞増殖特性、生化学的指標、免疫学的指標、特徴的産生物質、核型、分化能その他
適切な遺伝型又は表現型の指標を解析するとともに、必要に応じて機能解析を行うこと。また、培養期間の妥当性及び細胞の安定性を評価するために、予定の培養期間を超えて培養した細胞において目的外の変化がないことを適切な細胞特性指標等を用いて示すこと。これらの検討に際しては、あらかじめ試験的検体を用いた検討によって実施・検証しておくことでも良いが、これらの検討結果から患者に製品を適用する
際に選択すべき重要細胞特性指標を明らかにしておくこと。検討に際しては、検体の量的制限や技術的限界もあり、可能な範囲で考慮すればよい。適用後に体内での増殖等を期待する場合には、設定された基準による継代数又は分裂回数で期待された機能を発揮することを明らかにすること。
最終製品の形態、包装- 14 -

最終製品の形態、包装は、製品の品質を確保できるものでなければならない。
５

製品の保存及び運搬
中間製品又は最終製品を保存及び運搬する必要がある場合には、保存方法や期間及び運搬容器、運搬手段（温度管理等を含む。）を定め、その妥当性を明らかにすること（第３章参照）。

６

製造方法の恒常性
ヒト iPS（様）細胞加工医薬品等の製造に当たっては、製造工程を通じて、個別に加工した製品の細胞数、細胞生存率並びに製品の使用目的及び適用方法等からみた特徴(表現型の適切な指標、遺伝型の適切な指標、機能特性及び目的とする細胞の含有率等)が製品(ロット)間で本質的に損なわれないことを、あらかじめ評価しておくこと。この際、試験的検体を用いても良い。また、中間製品で評価することが、原材料としての細胞・組織の適格性や中間製品までの製造過程の妥当性をよく反映し、また、最終製品に向けての適正な道標となるなど、合理的な場合もあるので、必要に応じて選択肢とすること。
製造工程中の凍結保存期間や加工に伴う細胞培養の期間が長期に及ぶ場合には一定期間ごとに無菌試験を行うなど、無菌性が確保されることを確認すること。

７

製造方法の変更
開発途中に製造方法を変更した場合、変更前の製造方法による製品を用いて得た試
験成績を治験開始時又は承認申請に使用するときは、製造方法変更前後の製品の同等性／同質性を示すこと。

第３１

最終製品の品質管理総論
ヒト iPS（様）細胞加工医薬品等の品質管理全体の方策としては、最終製品の規格及び試験方法の設定、個別患者への適用ごとの原材料の品質管理、製造工程の妥当性の検証と一定性の維持管理のほか、中間製品の品質管理を適正に行うこと等が挙げられる。
ヒト iPS（様）細胞加工医薬品等においては目的細胞以外の未分化細胞の混入を否定するための方策が最も重要な要件の一つである。可能な限り中間製品の段階で目的細胞以外の未分化細胞の混入を否定することが望ましい。
最終製品の規格及び試験方法については、対象とする細胞・組織の種類及び性質、製造方法、各製品の臨床使用目的や使用方法、安定性、利用可能な試験法等によって異なると考えられるため、取り扱う細胞・組織によってこれらの違いを十分に考慮して設定すること。また、製造工程の妥当性の検証と一定性の維持管理法、中間製品の品質管理等との相互補完関係を考慮に入れて、全体として品質管理の目的が達成されるとの観点から、合理的に規格及び試験方法を設定し、その根拠を示すこと。なお、治験開始前の評価は、治験を実施する製品の品質として問題がないとみなせることを- 15 -

確認することを目的としている。したがって、無菌性やマイコプラズマの否定など必須なものを除き、治験後に臨床試験成績と品質の関係を論ずるために必要な品質特性については、やむを得ない場合は少数の試験的検体の実測値をもとにその変動をしかるべき範囲内に設定する暫定的な規格及び試験方法を設定することで差し支えない。
ただし、規格及び試験方法を含む品質管理法は治験の進行とともに充実・整備を図る
こと。
２

最終製品の品質管理法
最終製品について、以下に示す一般的な品質管理項目及び試験を参考として、必要で適切な規格及び試験方法を設定し、その根拠を明らかにすること。
ロットを構成しない製品を製造する場合は個別製品ごとに、ロットを構成する製品を製造する場合には、通常、各個別製品ではなく各ロットが品質管理の対象となるので、これを踏まえてそれぞれ適切な規格、試験方法を設定すること。
(1) 細胞数並びに生存率得られた細胞の数と生存率は、最終製品又は必要に応じて適切な製造工程の製品で測定すること。なお、治験開始時においては、少数の試験的検体での実測値を踏まえた暫定的な規格を設定することでも良い。
(2) 確認試験目的とする細胞・組織の形態学的特徴、生化学的指標、免疫学的指標、特徴的産
生物質その他適切な遺伝型あるいは表現型のうち、重要細胞特性指標を選択して、目的とする細胞であることを確認すること。
(3) 細胞の純度試験
目的細胞以外の未分化細胞、異常増殖細胞、形質転換細胞の有無や混入細胞の有無等の細胞の純度について、目的とする細胞・組織の由来、培養条件等の製造工程、中間製品の品質管理等を勘案し、必要に応じて試験項目、試験方法及び判定基準を示すこと。なお、治験開始時においては、少数の試験的検体での実測値を踏まえた暫定的な規格を設定することでも良い。
(4) 細胞由来の目的外生理活性物質に関する試験
細胞由来の各種目的外生理活性物質のうち、製品中での存在量如何で患者に安全性上の重大な影響を及ぼす可能性が明らかに想定される場合には、適切な許容量限度試験を設定すること。なお、治験開始時においては、少数の試験的検体での実測値を踏まえた暫定的な規格を設定することでも良い。
(5) 製造工程由来不純物試験
原材料に存在するか又は製造過程で非細胞成分、培地成分（フィーダー細胞を含む）、資材、試薬等に由来し、製品中に混入物、残留物、又は新たな生成物、分解物等として存在する可能性があるもので、かつ、品質及び安全性の面からみて望ましくない物質等(例えば、ウシ胎児血清由来のアルブミン、抗生物質等)については、
当該物質の除去に関するプロセス評価や当該物質に対する工程内管理試験の結果を考慮してその存在を否定するか、又は適切な試験を設定して存在許容量を規定すること。試験対象物質の選定及び規格値の設定に当たっては、設定の妥当性につい- 16 -

て明らかにすること。
なお、治験開始時においては、少数の試験的検体での実測値を踏まえた暫定的な規格を設定することでも良い。
(6) 無菌試験及びマイコプラズマ否定試験
最終製品の無菌性については、あらかじめ試験的検体を用いて全製造工程を通じて無菌性を確保できることを十分に評価しておく必要がある。最終製品について、患者に適用する前に無菌性(一般細菌及び真菌否定)を試験により示すこと。また、
適切なマイコプラズマ否定試験を実施すること。マイコプラズマ否定試験については、検証された核酸増幅法を用いることでもよい。最終製品の無菌試験等の結果が、患者への投与後にしか得られない場合には、投与後に無菌性等が否定された場合の対処方法をあらかじめ設定しておくこと。また、この場合、中間製品で無菌性を試
験により示し、最終製品に至る工程の無菌性を厳密に管理する必要がある。また、同一施設・同一工程で以前に他の患者への適用例がある場合には、全例において試験により無菌性が確認されていること。ロットを構成する製品で密封性が保証されている場合には、代表例による試験でよい。適用ごとに試験を実施する必要がある場合で、無菌試験等の結果が、患者への投与後にしか得られない場合には、適用の可否は直近のデータを参考にすることになるが、この場合でも最終製品の無菌試験等は必ず行うこと。
抗生物質は細胞培養系で極力使用しないことが望まれるが、使用した場合には、無菌試験に影響を及ぼさないよう処置すること。
(7) エンドトキシン試験
試料中の夾雑物の影響を考慮して試験を実施すること。規格値は必ずしも実測値によらず、日本薬局方等で示されている最終製品の 1 回投与量を基にした安全域を考慮して設定すればよい。また、工程内管理試験として設定することも考えられるが、その場合には、バリデーションの結果を含めて基準等を設定し、その妥当性を説明すること。
(8) ウイルス試験
原材料ないし製造工程においてバンク化されておらず、ウインドウピリオドが否定できず、HBV、HCV、HIV、HTLV を増殖させる可能性のある細胞の場合には、中間製品、最終製品等について、増殖可能性のあるウイルスについてその存在量に関する試験を実施し、iPS（様）細胞加工医薬品等の投与が患者の不利益にならないことを確認する必要がある。また、製造工程中で生物由来成分を使用する場合には、最終製品で当該成分由来のウイルスについての否定試験の実施を考慮すべき場合もあるかもしれないが、可能な限り、もとの成分段階での試験やプロセス評価で迷入が否定されていることが望ましい。
(9) 効能試験
細胞種、臨床使用目的又は特性等に応じた適切な効能試験の実施を考慮すべき場
合もある。なお、治験開始時においては、少数の試験的検体による実測値を踏まえた暫定的な規格を設定することでも良い。
(10) 力価試験- 17 -

細胞・組織から分泌される特定の生理活性物質の分泌が当該ヒト iPS（様）細胞加工医薬品等の効能又は効果の本質である場合には、その目的としている必要な効果を発揮することを示すために、当該生理活性物質に関する検査項目及び規格を設定すること。遺伝子を導入した場合の発現産物又は細胞から分泌される目的の生成物等について、力価、産生量等の規格を設定すること。なお、治験開始においては、
少数の試験的検体による実測値を踏まえた暫定的な規格を設定することでも良い。
(11) 力学的適合性試験
一定の力学的強度を必要とする製品については、適用部位を考慮した力学的適合性及び耐久性を確認するための規格を設定すること。なお、治験開始時においては、
少数の試験的検体による実測値を踏まえた暫定的な規格を設定することでも良い。
第３章 ヒト iPS（様）細胞加工医薬品等の安定性製品化したヒト iPS（様）細胞加工医薬品等又は重要なそれらの中間製品について、保存・流通期間及び保存形態を十分考慮して、細胞の生存率及び力価等に基づく適切な安定性試験を実施し、貯法及び有効期限を設定し、その妥当性を明らかにすること。特に凍結保管及び解凍を行う場合には、凍結及び解凍操作による製品の安定性や規格への影響がないかを確認すること。また、必要に応じて標準的な製造期間を超える場合や標準的な保存期間を超える長期保存についても検討し、安定性の限界を可能な範囲で確認すること。ただし、製品化後直ちに使用するような場合はこの限りではない。
また、製品化したヒト iPS（様）細胞加工医薬品等を運搬する場合には、運搬容器及び運搬手順(温度管理等を含む。)等を定め、その妥当性について明らかにすること。
第４章 ヒト iPS（様）細胞加工医薬品等の非臨床安全性試験
製品の特性及び適用法から評価が必要と考えられる安全性関連事項について、技術的に可能であれば、科学的合理性のある範囲で、適切な動物を用いた試験又は in vitroでの試験を実施すること。なお、非細胞成分及び製造工程由来の不純物等については、
可能な限り、動物を用いた試験ではなく理化学的分析法により評価すること。また、最終製品における未分化細胞の存在が異所性組織形成や腫瘍形成・がん化の可能性など安全性上の重要な関心事であるが、可能な限り、セル・バンクや中間製品段階等での徹底的な解析により、混在の可能性を否定するか、あるいは、目的細胞から未分化細胞の効
果的分離・除去法や不活化法を開発し、活用することにより、混在の可能性を最小限にする努力が求められる。さらに、投与経路等の選択も安全性上の懸念を最小限にするための有用な方策である可能性がある。
ヒト由来の製品を実験動物等で試験して必ずしも意義ある結果が得られるとは限らない。このため、動物由来の製品モデルを作成し適切な実験動物に適用する試験系により試験を行うことで、より有用な知見が得られると考えられる場合には、むしろ、このような試験系を用いることに科学的合理性がある可能性がある。その際は、対象疾患ごとに適切なモデル動物を用いた試験の実施を考慮する（注：例えば神経疾患ならばサル等、循環器疾患ならばブタ・イヌ等が適している場合がある）。ただし、ヒト iPS（様）
細胞加工医薬品等を構成する細胞と同一の特徴を有する細胞集団が同一の手法にてヒ- 18 -

ト以外の動物種からも得られるとは限らず、また同様の培養条件等で同等／同質な製品が製造できるとも限らないことから、このような試験の採用、実施及び評価にあたっては、慎重な事前検討や対応が必要である。ヒト以外の動物種から得た iPS（様）細胞加工製品を用いて動物実験を行った場合、その外挿可能性を説明すること。場合によっては細胞を用いる試験系も考慮し、このようなアプローチにより試験を行なった際には、その試験系の妥当性について明らかにすること。
以下に、必要に応じて非臨床的に安全性を確認する際の参考にすべき事項及び留意点の例を示す。これらは例示であって、合理性のない試験の実施を求める趣旨ではなく、製品の特性及び臨床適用法等を考慮して、必要かつ適切な試験を実施し、その結果について総合的な観点から評価、考察すること。
１ 培養期間を超えて培養した細胞について、目的外の形質転換を起こしていないことや目的細胞以外の細胞が異常増殖していないことを明らかにすること。
２ 必要に応じて細胞・組織が産生する各種サイトカイン、成長因子等の生理活性物質の定量を行い、生体内へ適用したときの影響に関して考察を行うこと。
３ 製品の適用が患者の正常な細胞又は組織に影響を与える可能性、及びその安全性について検討、考察すること。
４ 患者への適用により、製品中の細胞や混入する未分化細胞が異所性組織を形成する
可能性、及びその安全性について検討、考察すること。その際、製品の種類や特性、投与経路、対象疾患、及び試験系の妥当性等を総合的に勘案すること。
５ 製品及び導入遺伝子の発現産物等による望ましくない免疫反応が生じる可能性、及びその安全性について検討、考察すること。
６ 最終製品の細胞又は中間製品の細胞について、適切な動物モデル等を利用し、良性腫瘍を含む腫瘍形成及びがん化の可能性に関して検討、考察すること。その際、製品の種類や特性、投与量・投与経路、生着部位、対象疾患及び試験系の妥当性等を総合的に勘案すること。また、腫瘍形成又はがん化の可能性がある場合には、期待される有効性との関係等を勘案して、使用することの妥当性及び合理性について明らかにすること。（注：造腫瘍性試験において最も重要なのは、最終製品が患者に適用された
場合の製品の造腫瘍性を可能な限り的確に評価することである。しかし、十分な細胞数が得られない等の理由により最終製品を構成する細胞を用いることができず、中間製品の細胞を用いて最終製品の造腫瘍性を評価しなければならない場合も想定される。また、動物モデルを使用した造腫瘍性試験においては、細胞の分散や足場への接
着、細胞密度、投与部位等の条件が最終製品と必ずしも一致するものではない。さらに、動物の種・系統・免疫状態による感度差もある。これらの事情を総合的に勘案して、最終製品の造腫瘍性を評価する必要がある。また、最終製品の造腫瘍性に起因する患者へのリスクについては、対象疾患を治療することによる患者へのベネフィット
等とのバランスを踏まえて合理的に評価すること）。
７ 製造工程で外来遺伝子の導入が行われ、最新の知見に基づき、最終製品中で機能している場合や残存していると判断された場合には、遺伝子治療用医薬品指針に定めるところに準じて試験を行うこと。ウイルスベクターを使用した場合には増殖性ウイル
スがどの程度存在するかを検査するとともに、検査方法が適切であることについても- 19 -

明らかにすること。
また、導入遺伝子及びその産物の性状について調査し、安全性について明らかにすること。細胞については、増殖性の変化、良性腫瘍を含む腫瘍形成及びがん化の可能性について考察し、明らかにすること。染色体への挿入の可能性があるベクターを用いた場合には、挿入変異による細胞の異常増殖性や造腫瘍性についての評価や臨床適応に当たっての長期フォローアップの必要性を考慮すること。
８ 動物由来のモデル製品を含めて製品の入手が容易であり、かつ臨床上の適用に関連する有用な安全性情報が得られる可能性がある場合には、合理的に設計された一般毒性試験の実施を考慮すること。
なお、一般毒性試験の実施に当たっては、平成元年 9 月 11 日付け薬審 1 第 24 号厚生省薬務局新医薬品課長・審査課長連名通知「医薬品の製造(輸入)承認申請に必要な毒性試験のガイドラインについて」の別添「医薬品毒性試験法ガイドライン」等を参照すること。
第５章 ヒト iPS（様）細胞加工医薬品等の効力又は性能を裏付ける試験
１ 技術的に可能かつ科学的に合理性のある範囲で、実験動物又は細胞等を用い、適切に設計された試験により、ヒト iPS（様）細胞加工医薬品等の機能発現、作用持続性及び医薬品・医療機器として期待される臨床効果の実現可能性(Proof-of-Concept)を示すこと。
２ 遺伝子導入細胞にあっては、導入遺伝子からの目的産物の発現効率及び発現の持続性、導入遺伝子の発現産物の生物活性並びに医薬品等として期待される臨床効果の実現可能性(Proof-of-Concept)を示すこと。
３ 適当な動物由来細胞・組織製品モデル又は疾患モデル動物がある場合には、それを用いて治療効果を検討すること。
４ 治験開始段階では、当該製品の効力又は性能による治療が他の治療法と比較したと
きはるかに優れて期待できることが国内外の文献又は知見等により合理的に明らかにされている場合には、必ずしも詳細な実験的検討は必要とされない。
第６章 ヒト iPS（様）細胞加工医薬品等の体内動態
１ 製品を構成する細胞・組織及び導入遺伝子の発現産物について、技術的に可能で、かつ、科学的合理性がある範囲で、実験動物での吸収及び分布等の体内動態に関する試験等により、患者等に適用された製品中の細胞・組織の生存期間、効果持続期間を推測し、目的とする効果が十分得られることを明らかにすること（注：体内動態に関する試験等には、例えば組織学的検討、AluPCR 法、磁気共鳴画像診断法(MRI)、陽電子放射断層撮影法(PET)、単一光子放射断層撮影法(SPECT)、バイオイメージングなどがある）。
２ ヒト iPS（様）細胞加工医薬品等の用法（投与方法）について、動物実験を通してその合理性を明らかとすること。特に、全身投与にあっては投与後の細胞の全身分布を動物実験などから外挿し、有用性の観点から議論すること（注:投与経路ごとにどこに生着するかは不明であるが、全身投与よりも局所投与が望ましいと想定される。

- 20 -

しかし、全身投与であってもその有用性において被投与患者に有益であると合理的に説明が可能である場合には用法として設定可能である。例えば、生着を期待する臓器以外への分布を最低限に抑えることが合理的な投与方法であると想定される。また、
異所性生着しても、被投与患者にとって不利益（生体機能への悪影響）が生じない場
合は用法として肯定できる可能性がある。異所性分化による不利益とは、例えば当該細胞が心臓に異所性生着して骨形成する場合が想定され、それが不整脈を惹起したよ
うな場合である）。
３ 当該細胞・組織が特定の部位(組織等)に直接適用又は到達して作用する場合には、その局在性を明らかにし、局在性が製品の有効性・安全性に及ぼす影響を考察すること。
第７章 臨床試験
ヒト iPS（様）細胞加工医薬品等の臨床試験を開始するに当たって支障となる品質及び安全性上の問題が存在するか否かの段階における安全性については、臨床上の有用性を勘案して評価されるものであり、ヒト iPS（様）細胞加工医薬品等について予定されている国内の臨床試験計画について以下の項目を踏まえて評価すること。その際、明らかに想定される製品のリスクを現在の学問・技術を駆使して排除し、その科学的妥当性を明らかにした上で、なお残る「未知のリスク」と、重篤で生命を脅かす疾患、身体の機能を著しく損なう疾患、身体の機能や形態を一定程度損なうことにより QOL を著しく損なう疾患などに罹患し、従来の治療法では限界があり、克服できない患者が「新たな治療機会を失うことにより被るかもしれないリスク」とのリスクの大小を勘案し、かつ、
これらすべての情報を開示した上で患者の自己決定権に委ねるという視点を持つこと、
すなわち、リスク・期待されるベネフィットの情報を開示した上で治験に入るかどうかの意思決定は患者が行うという視点を入れて評価することが望まれる。
１ 対象疾患２ 対象とする被験者及び除外すべき被験者の考え方
３ ヒト iPS（様）細胞加工医薬品等及び併用薬の適用を含めた、被験者に対して行われる治療内容（注：投与・移植した細胞の機能を維持・向上・発揮させるために併用する薬剤が想定される場合、当該薬剤の作用を in vitro あるいは in vivo で検証すること）。
４ 既存の治療法との比較を踏まえた臨床試験実施の妥当性
５ 現在得られている情報から想定される製品並びに患者のリスク及びベネフィットを含め、被験者への説明事項の案
なお、臨床試験は、適切な試験デザイン及びエンドポイントを設定して実施する必要があり、目的とする細胞・組織の由来、対象疾患及び適用方法等を踏まえて適切に計画すること。

- 21 -

薬生機審発０６２７第１号
令和元年６月２７日

各都道府県衛生主管部（局）長 殿

厚生労働省医薬・生活衛生局医療機器審査管理課長
（
公
印
省
略
）

ヒト細胞加工製品の未分化多能性幹細胞・形質転換細胞検出試験、造腫瘍性試験及び遺伝的安定性評価に関するガイドラインについて

ヒト細胞加工製品中に混在する未分化多能性幹細胞及び形質転換細胞について、代表的検出試験例及び特定のヒト細胞加工製品の品質・安全性評価のために実施する試験を選択する際に留意すべき事項を示すガイドラインを、別紙のとおり作成しましたので、貴管下関係業者等に対し周知方御配慮願います。
なお、本ガイドラインは、現時点における科学的知見に基づく基本的考え方をまとめたものであり、学問上の進歩等を反映した合理的根拠に基づいたものであれば、必ずしもここに示した方法を固守するよう求めるものではありません。

別添

ヒト細胞加工製品の未分化多能性幹細胞・形質転換細胞検出試験、造腫瘍性試験
及び遺伝的安定性評価に関する留意点
目次頁

１．はじめに

1

２．本文書の位置づけ

2

３．用語の定義2

４．一般的留意点

3５．ヒト ES/iPS 細胞加工製品のための造腫瘍性関連試験

45.1. 原料・原材料の品質特性評価・品質管理のための造腫瘍性試験

45.2. 中間製品又は最終製品の造腫瘍性細胞の混在を評価するための試験

45.2.1. 中間製品・最終製品の未分化多能性幹細胞検出試験

45.2.1.1. in vitro 試験

45.2.1.2. in vivo 試験

55.2.2. 中間製品・最終製品の形質転換細胞検出試験

65.2.2.1. in vitro 試験

65.2.2.2. in vivo 試験

75.3. 最終製品細胞のヒトにおける生着部位での腫瘍形成能を評価するための試験

95.3.1. 試験動物の選択105.3.2. 対照細胞の選択105.3.3. 試験動物の数と性別

115.3.4. 試験検体の投与部位と検体中の細胞数及び検体の形態

115.3.5. 観察期間

125.3.6. 投与部位の観察135.3.7. 病理学的評価

13

5.3.8. 結果の解釈

13

６．ヒト体細胞／体性幹細胞加工製品のための造腫瘍性関連試験

146.1. 原料・原材料の品質特性評価・品質管理のための造腫瘍性試験

146.2. 最終製品のための造腫瘍性関連試験の留意点

14

７．遺伝的安定性に関する一般的留意点

15

参考文献

16

表１

混在する未分化 ES/iPS 細胞の検出法の詳細

19

表２

混在する形質転換細胞の検出法の詳細

21

参考情報（各種試験法プロトコール）

22

１．はじめに再生医療等製品（「医薬品、医療機器等の品質、有効性及び安全性の確保等に関する法律」（昭和 35 年法律第 145 号）第 2 条第 9 項に規定する「再生医療等製品」をいう。以下同じ。）のうち、ヒト細胞加工製品の品質及び安全性を確保するための基本的な技術要件は、「ヒト（自己）由来細胞や組織を加工した医薬品又は医療機器の品質及び安全性の確保について」（平成 20 年２月８日付け薬食発第 0208003 号厚生労働省医薬食品局長通知。以下｢ヒト（自己）由来細胞・組織加工医薬品等の指針｣という。
）及び「ヒト（同種）由来細胞や組織を加工した医薬品又は医療機器の品質及び安全性の確保について」（平成 20 年９月 12 日付け薬食発第 0912006 号厚生労働省医薬食品局長通知。以下｢ヒト（同種）由来細胞・組織加工医
薬品等の指針｣という。
）に定められているところである。また、ヒト細胞加工製品の中でも、ヒト幹細胞加工製品の品質及び安全性の確保については、「ヒト（自己）体性幹細胞加工医
薬品等の品質及び安全性の確保について」（平成 24 年９月７日付け薬食発第 0907 第２号厚生労働省医薬食品局長通知）、「ヒト（同種）体性幹細胞加工医薬品等の品質及び安全性の確保について」（平成 24 年９月７日付け薬食発第 0907 第３号厚生労働省医薬食品局長通知）、「ヒト（自己）iPS（様）細胞加工医薬品等の品質及び安全性の確保について」（平成 24 年
９月７日付け薬食発第 0907 第４号厚生労働省医薬食品局長通知）、「ヒト（同種）iPS（様）
細胞加工医薬品等の品質及び安全性の確保について」（平成 24 年９月７日付け薬食発第 0907
第５号厚生労働省医薬食品局長通知）及び「ヒト ES 細胞加工医薬品等の品質及び安全性の確保について」（平成 24 年９月７日付け薬食発第 0907 第６号厚生労働省医薬食品局長通知）（以下｢ヒト幹細胞加工医薬品等 5 指針｣と総称する。
）にも定められているところである。
ヒト細胞加工製品に特有の安全性関連リスクとしては、製品中に混在する形質転換細胞に起因する腫瘍形成のリスクがある。また、ヒト胚性幹細胞加工製品（以下「ヒト ES 細胞加工製品」という。
）やヒト人工多能性幹細胞加工製品（以下「ヒト iPS 細胞加工製品」という。
）のようにテラトーマ形成能を固有の性質とするヒト多能性幹細胞を原料とする場合には、最終製品に残存する未分化な多能性幹細胞に起因する腫瘍形成のリスクもある。すな
わち、ヒト細胞加工製品中に混在する形質転換細胞及び未分化な多能性幹細胞等の造腫瘍性細胞はハザードであり、その存在量及び種類の情報を把握することは、ヒト細胞加工製品の品質及び安全性の確保において重要である。本文書は、ヒト細胞加工製品の品質及び安全性を非臨床的に評価する際に参考とすべき事項及び留意点のうち、特にヒト細胞加工製品
中に混在する未分化多能性幹細胞及び形質転換細胞について、その代表的検出試験例を示すと同時に、これらの試験の中から、特定のヒト細胞加工製品の品質・安全性評価のために実施する試験を選択する際に留意すべき事項を示すものである。

1

２．本文書の位置づけ
本文書は、技術開発の著しい多種多様なヒト細胞加工製品中に混在する可能性がある造腫
瘍性細胞の検出を対象とするものである。また、検出試験そのものの開発や技術革新も日進
月歩である。したがって、留意すべき事項を網羅的に示したものではなく、現時点で考えられる点について可能な限り示しているに過ぎず、今後の更なる技術革新や知見の集積等を踏まえ改訂されるものであり、そのまま製造販売承認申請において適用されるべきとの拘束力を有するものではない。また、本文書は各試験の特徴・性能を整理したものであって、開発段階のどのステージに適用すべきかを明示するものではない。
製品の評価に当たっては、個別の製品の特性を十分理解した上で、科学的な合理性・妥当性をもって柔軟に対応することが必要である。本文書で提示された試験法やその詳細についても、試験の目的に適うよう一部改変することや、省略することも、その科学的な合理性・妥当性が示されればむしろ奨励される。なお、本文書のほか、国内外の他の関連ガイドラインを参考にすることも考慮すべきである。
３．用語の定義
本文書における用語の定義は、ヒト（自己）由来細胞・組織加工医薬品等の指針、ヒト（同種）由来細胞・組織加工医薬品等の指針、ヒト幹細胞加工医薬品等 5 指針の定義によるほか、以下のとおりとする。
1)

造腫瘍性（tumorigenicity）：動物に移植された細胞集団が増殖することにより、悪性又は良性の腫瘍を形成する能力のこと。生理活性物質又は化学物質が細胞を不死化して悪性又は良性の腫瘍を誘発する能力（腫瘍原性、oncogenicity）や、生理活性物質又は化学物質が細胞を不死化して悪性腫瘍を誘発する能力（がん原性、carcinogenicity）とは区別される。なお、本文書では、ES/iPS 細胞（製品中では未分化 ES/iPS 細胞と称する）や腫瘍を形成するおそれのある形質転換細胞は動物試験での実証の有無にかかわらず造腫瘍性細胞として取り扱う。

2)

細胞基材：微生物細胞又はヒト若しくは動物由来の細胞で、ヒトを対象に in vivo 又は
ex vivo で投与される生物製剤（再生医療等製品を含む）を生産する上で必要な能力を有するもの（「「生物薬品（バイオテクノロジー応用医薬品/生物起源由来医薬品）製造
用細胞基材の由来、調製及び特性解析」について」（平成 12 年７月 14 日付け医薬審第 873 号厚生省医薬安全局審査管理課長通知）参照）。

3)

セル・バンク：均一な組成の内容物をそれぞれに含む相当数の容器を集めた状態で、一定の条件下で保存しているもの。個々の容器には、単一の細胞プールから分注された細胞が含まれている（「「生物薬品（バイオテクノロジー応用医薬品/生物起源由来
医薬品）製造用細胞基材の由来、調製及び特性解析」について」参照）。

4)

原材料：医薬品等の製造に使用する原料又は材料の由来となるもの（「生物由来原料基準」（平成 26 年厚生労働省告示第 375 号）参照）
。
2

5)

中間製品：製造の中間工程で造られたものであって、以後の製造工程を経ることによって製品となるもの（「再生医療等製品の製造管理及び品質管理の基準に関する省令」（平成 26 年厚生労働省令第 93 号。以下「GCTP 省令」という。
）参照）
。

6)

腫瘍：細胞が生体内の制御に反して自律的に過剰に増殖することによってできる組織。
「悪性腫瘍」又は「良性腫瘍」に分けられる。

7)

テラトーマ（奇形腫）： ２胚葉性成分又は３胚葉性成分を有する胚細胞性腫瘍。
「成熟奇形腫」と「未熟奇形腫」がある。

8)

悪性腫瘍：腫瘍の中でも特に浸潤性を有し、遠隔部へ転移するなど悪性を示すものを指す。

9)

がん：平仮名の「がん」は、「癌」、「肉腫」及び「白血病」などの血液悪性腫瘍も含めた広義の悪性腫瘍を指す。漢字で表記する「癌」は、悪性腫瘍のなかでも特に上皮由来の「癌腫（上皮腫）」のことを指す。
「肉腫」とは非上皮性の結合組織、筋、内皮細胞等に由来する悪性腫瘍である。

10) 腫瘤：発生原因に関わらず、体表や体内で確認された何らかの塊。いわゆる「しこり」
や「こぶ」を指す。腫瘤と腫瘍の違いについては、腫瘤は膿瘍なども含む「形態」であり、腫瘍は細胞が増殖した「病態」である。
11) 形質転換細胞：不死化や悪性化など、造腫瘍性に関連した形質転換が生じた細胞を指す。
12) 製品細胞：製品に含まれる細胞13) 最終製品細胞：最終製品に含まれる細胞14) ハザード：危害の潜在的な原因。危害は、健康への被害を指す。
（「品質リスクマネジ
メントに関するガイドライン」（平成 18 年 9 月 1 日付け薬食審査発第 0901004 号及び薬食監麻発第 0901005 号厚生労働省医薬食品局審査管理課長及び監視指導・麻薬対策課長連名通知）参照）
15) リスク：危害の発生の確率とそれが発生したときの重大性の組み合わせ。重大性は、ハザードから生じうる結果の大きさを指す。
（「品質リスクマネジメントに関するガイ
ドライン」参照）
４．一般的留意点
ヒト細胞加工製品の出発原料の種類は、体細胞、体性幹細胞、ES 細胞、iPS 細胞など、多岐にわたる。さらに、出発原料細胞の由来については、自己又は同種、同種のうちでは HLA
ホモ接合型又はそれ以外など、様々な分類が想定される。ヒト細胞加工製品は構造又は剤形（例：細胞懸濁液、細胞シート等）も多様であり、その臨床適用に際して必要な細胞数も製品ごとに異なる。その上、適用の経路、適用部位、免疫抑制剤の使用の有無、患者の病状の緊急性等についても、様々なケースが想定される。したがって、個別製品における造腫瘍性のリスク評価とリスク管理においては、各試験法の能力と限界を科学的に理解した上で、総3

合的な考察を行うこと。
５．ヒト ES/iPS 細胞加工製品のための造腫瘍性関連試験
ヒト胚性幹細胞加工製品又はヒト人工多能性細胞加工製品（ヒト ES/iPS 細胞加工製品）の製造における造腫瘍性関連試験には、目的別に、①原料・原材料の品質特性評価・品質管理のための造腫瘍性試験、②中間製品又は最終製品の造腫瘍性細胞の混在を評価するための試験、③最終製品細胞のヒトにおける生着部位での腫瘍形成能を評価するための試験、の3 種類がある。①、②、③の試験については、それぞれ 5.1、5.2、5.3 項で述べる。特にこれらのうち②の例として、いくつかの in vitro 試験法又は in vivo 試験法を表１及び表２に例示した。造腫瘍性の評価においては、各試験法の原理を理解し、検出限界等の性能を確認した
上で、試験法を取捨選択し、目的に応じた評価系をデザインすること。
5.1. 原料・原材料の品質特性評価・品質管理のための造腫瘍性試験
ヒト ES/iPS 細胞加工製品を製造するための細胞基材として、ヒト ES 細胞又はヒト iPS 細胞のセル・バンクを樹立した際に、セル・バンク中の細胞の増殖性と多能性を検証するためにテラトーマ形成能による造腫瘍性を確認することがある。この際の造腫瘍性試験に当たっては、世界保健機関（WHO）の生物薬品標準化専門委員会第 61 次報告（Technical Report
Series No. 978（WHO TRS 978）平成 25 年）の Annex 31 が参考になる。
5.2. 中間製品又は最終製品の造腫瘍性細胞の混在を評価するための試験
ヒト ES/iPS 細胞加工製品の中間製品又は最終製品となる細胞集団には、目的細胞又はその前駆細胞に加え、未分化なヒト ES/iPS 細胞及びその他の目的外細胞が混在している可能性がある。ヒト ES/iPS 細胞はテラトーマ形成能による造腫瘍性を元来の特性として保持していることから、中間製品又は最終製品における未分化ヒト ES/iPS 細胞の混在量を、腫瘍を形成するおそれのある目的外細胞である形質転換細胞の混在量とともに品質特性（造腫瘍性細胞の混在）として評価し、管理することが必要である。
5.2.1. 中間製品・最終製品の未分化多能性幹細胞検出試験
5.2.1.1. in vitro 試験
中間製品又は最終製品の中に混在する未分化ヒト ES/iPS 細胞に関しては、ヒト ES/iPS 細胞の分子マーカーを検出することによって評価することが可能である。方法としてはフローサイトメトリーや定量 RT-PCR 2,3、及び培養上清中の H3+ポドカリキシンを検出する方法
4、ラミニン 521 によるヒト多能性幹細胞直接培養増幅法 5 などが挙げられる。ただし、使用する分子マーカーの妥当性は、試験対象となる細胞種ごとに予め確認しておく必要がある。例えば LIN28 は様々な正常ヒト分化細胞・ヒト組織において発現が認められず、優れた
ヒト ES/iPS 細胞のマーカーと考えられているが 2,3、ヒト iPS 細胞から間葉系幹細胞への分4化誘導においては、iPS 細胞マーカーとしての特異性は高くないことが知られている 5。なお、ヒト ES/iPS 細胞は酵素処理等により単細胞にまで分散するとアポトーシスを起こす性質をもつため、軟寒天コロニー形成試験により混在する未分化なヒト ES/iPS 細胞を検出することはできない 2。
5.2.1.2. in vivo 試験
製品中の未分化ヒト ES/iPS 細胞の混在は、適切な細胞特性指標を用いて in vitro 試験で検査し、評価することが望ましい。ただし、製品における未分化ヒト ES/iPS 細胞の混在量は、免疫不全動物での造腫瘍性を指標にして評価することも必須ではないが可能である。免疫不全動物としては、NOD.Cg-Prkdcscid Il2rgtm1Sug/Jic マウス（以下「NOG マウス」という。）6、NOD.Cg-Prkdcscid Il2rgtm1Wjl/SzJ マウス（以下「NSG マウス」という。
） 7 などの重度免疫不全
マウス系統が挙げられる。これらのマウスは T 細胞、B 細胞及び NK 細胞を欠失しており、ヌードマウスと比べてヒトの細胞や組織の生着性が高い 8,9,10。C.Cg-Rag2tm1Fwa Il2rgtm1Sug/Jic
マウス（以下「BRG」マウス）という。
）も T 細胞、B 細胞及び NK 細胞を欠失した系統だが、ヒト造血幹細胞の生着性が NOG マウスや NSG マウスよりも低いことが知られている
11,12。SCID マウスや NOD/SCID マウスについては、自然発生的な胸腺腫が見られるため、長期観察が必要となる造腫瘍性試験目的では、使用を推奨しない。WHO TRS 978 で推奨されるヌードマウスを用いる方法は、僅かに残存する未分化ヒト ES/iPS 細胞を検出するには感度が低く、結果が偽陰性になってしまう恐れがあるため、製品の未分化ヒト ES/iPS 細胞の混在を評価する目的には適さない 10。投与部位については、手技が簡単で、手技熟練度による結果のバラツキを防げること、多くの製品細胞を投与することが可能であること、かつ、容易に腫瘍形成の時間経過を観察することができることから、背部皮下が一般的に用いられる。投与部位の観察方法に関しては、5.3.6.項を参考にすること。
製品細胞に混在する未分化ヒト ES/iPS 細胞を定量化するのみの目的で in vivo 試験を実施することは例外的と考えられるが、仮にそうした目的のために試験するには、陽性対照細胞の同等な条件（投与部位・方法）での細胞移植による試験の設定が、製品細胞の試験時又は事前検討において必須である。陽性対照細胞としては、製品中の未分化ヒト ES/iPS 細胞の残存を対象とするのであれば、一般に、製品細胞に混在する可能性が考えられる製品の製造
用細胞基材である未分化ヒト ES/iPS 細胞を用いる。製品細胞を投与する際には、細胞をマトリゲルに懸濁して投与した方が検出感度は高くなる 8,10,13,14。なお、ヒト ES/iPS 細胞はト
リプシン処理等による単一細胞への分散によりアポトーシスを起こす性質を持つため、マウスへの投与時にはこれを防ぐ対策が必要である。分散誘導性アポトーシス防止策としては、トリプシン処理等を行わずに製品を投与する方法以外に、トリプシン処理等により分散した製品細胞を ROCK 阻害薬及びヒト新生児由来線維芽細胞とともにマトリゲルに懸濁して投与する 15,16 などの方法がある。製品細胞の移植では、実際の臨床応用時の細胞用量を勘案し、移植行為自体もアーチファクトが生じない範囲で、できるだけ多くの製品細胞を移植
5

することが望ましい。また試験動物の数は、移植行為の難易度や試験動物の生存率等を考慮した上で設定する。1 群につき最終評価可能な匹数として 10 匹以上で実施することが望ましいが、１群につき最終評価可能な匹数として最低でも 6 匹以上で実施すれば、定量的測定
項目におけるデータのバラツキが母集団のバラツキを概ね反映していると考えられる。
陽性対照細胞と同様な未分化ヒト ES/iPS 細胞の残存を想定した上で試験を行うので、製品細胞の投与時に使用する培地は、ヒトに投与する際に用いられるものよりも陽性対照細胞の増殖に適したものが利用可能ならば、それを使用する。
中間製品又は最終製品における未分化ヒト ES/iPS 細胞の混在量を評価するために、製品細胞又は陰性対照細胞となるヒト二倍体細胞に未分化ヒト ES/iPS 細胞をスパイクした陽性対照群を設定することが必要である。陰性対照群については、陰性対照細胞となるヒト二倍体細胞の入手と利用の可能性を勘案して、その設定の可否を検討する。試験時又は事前に検討する陽性対照群においては、異なる用量の未分化ヒト ES/iPS 細胞を含む細胞試料を移植した複数の群を設定し、最低腫瘍形成用量（TPDmin：minimum tumor-producing dose）と腫瘍出現までの期間を確認する必要がある。観察期間については、陽性対照群の中の TPDmin における腫瘍形成確率が一定値に達する時点を十分超える期間とする。
なお、未分化ヒト ES/iPS 細胞の混在を評価することが目的の場合には、試験系の精度向上のために片性の動物のみを使用することも許容されうる。
TPDmin における腫瘍形成確率をもとに、被験製品から得られた結果が偽陰性である確率を求めておくこと。なお、TPDmin 以上の混在がないことを統計学的確からしさとともに示す
ための匹数の設定方法も知られている 8。その他の技術的な詳細については、5.3.6.項を参考にすること。
なお一般には、未分化 ES/iPS 細胞検出 in vivo 試験は、中間製品・最終製品の形質転換細胞検出試験（5.2.2.2.項）を兼ねて実施するのが現実的である。
5.2.2. 中間製品・最終製品の形質転換細胞検出試験
5.2.2.1. in vitro 試験
中間製品又は最終製品の中に混在する形質転換細胞に関しては、既定の培養期間を超えた細胞の増殖特性解析による不死化した形質転換細胞検出 17,18 や、軟寒天コロニー形成試
験 2,8 又はデジタル軟寒天コロニー形成試験 19 による足場非依存性増殖細胞（悪性形質転換細胞）の検出などによって評価が可能である。ただし、臨床での製品使用時には、いずれのin vitro 試験でも検出困難な形質転換細胞の存在の可能性を考慮したうえでリスク評価を行うこと。
細胞増殖特性解析は、形質転換により不死化した細胞を、悪性度の有無にかかわらず検出することのできる試験である。一方、デジタル軟寒天コロニー形成試験は、高い感度で形質転換細胞を検出することができる試験であるが、検出できるのは足場非依存性増殖能を持
つ細胞、すなわち悪性度の高い形質転換細胞に限られる。
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いずれにしても、中間製品又は最終製品における形質転換細胞の混在量を評価するために、陽性対照細胞とする造腫瘍性形質転換細胞を設定する。また試験を行う際には、製品細胞又は陰性対照細胞となるヒト二倍体細胞に陽性対照細胞をスパイクした陽性対照群を設ける。被験製品中の形質転換細胞の混在量は、混在しうる形質転換細胞の造腫瘍性を陽性対
照細胞と同等と仮定したうえで定量化することができる。混在する可能性のある形質転換
細胞の特性があらかじめ推定されており、かつ、これに類似する表現型を示す細胞株が利用可能な場合以外は、腫瘍形成能が良く研究され認知されている HeLa 細胞等を陽性対照細胞として使用する。なお、陽性対照細胞には、適切に品質管理された細胞提供機関から入手した細胞株を使用することが望ましい。
これらの既存の in vitro 試験で設定された培養条件で製品細胞が培養できない場合であって、中間製品又は最終製品の中に混在する形質転換細胞に特徴的な遺伝子や分子を同定することが可能な場合は、種々のバリデーション試験を実施した上で培養をせずに、分子生物学的に混在が定量化できるような検出系の設定を行うことが考えられるが、極めて個別的な試験となるので、一般的技術要求とすることや標準法を本文書で示すことはできない。
5.2.2.2. in vivo 試験
製品中の腫瘍形成能を持つ形質転換細胞の混在は、適切な細胞特性指標を用いて in vitro
試験で検査し、評価することが望ましい。ただし、製品における形質転換細胞の混在量は免疫不全動物での造腫瘍性を指標にして評価することも必須ではないが可能である。免疫不全動物としては、NOG マウス 6、NSG マウス 7 などの重度免疫不全マウス系統が挙げられる。これらのマウスは T 細胞、B 細胞及び NK 細胞を欠失しており、ヌードマウスと比べてヒトの細胞や組織の生着性が高い 8,9,10。トリプシン処理などにより分散した製品細胞を投与する場合には、細胞をマトリゲルに懸濁して投与した方が検出感度は高くなる 8,10,13,14。BRG
マウスも T 細胞、B 細胞及び NK 細胞を欠失した系統だが、ヒト造血幹細胞の生着性が NOG
マウスや NSG マウスよりも低いことが知られている 11,12。SCID マウスや NOD/SCID マウ
スについては、自然発生的な胸腺腫が見られるため、長期観察が必要となる造腫瘍性試験目
的では使用を推奨しない。WHO TRS 978 で推奨されるヌードマウスを用いる方法も、僅かに混在する形質転換細胞を検出するには感度が低く、結果が偽陰性になってしまう恐れがあるため、本項の目的には適さない 8、10。
中間製品又は最終製品における形質転換細胞の混在量を評価する際には、陽性対照細胞とする形質転換細胞を設定する必要がある。すなわち、陽性対照細胞を製品細胞又は陰性対照細胞となるヒト二倍体細胞にスパイクした陽性対照群を設定し、製品細胞の試験時又は事前検討において、その造腫瘍性を確認する。設定した陽性対照群においては、異なる用量の陽性対照細胞を含む細胞試料を移植した複数の群を設定し、TPDmin と腫瘍出現までの期間をあらかじめ確認しておく。このような検討を行うことにより、製品細胞中の形質転換細胞の定量的評価が可能となる。
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混在する可能性のある形質転換細胞の特性があらかじめ推定されており、かつこれに類似する表現型を示す細胞株が利用可能である場合以外は、腫瘍形成能が良く研究され認知されている HeLa 細胞等を陽性対照細胞として使用する。用量の異なる陽性対照細胞をスパイクした陽性対照群を設定し、陽性対照細胞の TPDmin を事前に評価しておく。算出される
形質転換細胞の混在量は、あくまで混在しうる形質転換細胞の造腫瘍性を陽性対照細胞と同等と仮定したうえで定量化されたものであることに注意すること。なお、陽性対照細胞には、適切に品質管理された細胞提供機関から入手した細胞株を使用することが望ましい。
投与部位については、手技が簡単で、手技熟練度による結果のバラツキを防げること、多くの製品細胞を投与することが可能であること、かつ、容易に腫瘍形成の時間経過を観察することができることから、背部皮下が一般的に用いられるが、臨床上の移植経路や移植部位と造腫瘍性との関連について特に関心が高い場合（5.3 項参照）には、可能な範囲で臨床適用と同様とすることを考慮する。投与部位の観察方法に関しては、5.3.6.項を参考にすること。
試験時又は事前検討において、陽性対照群の中で腫瘍形成が認められる TPDmin を確認するとともに、陽性対照群の中の TPDmin における腫瘍形成確率が一定値に達する時点を十分超えた時点まで観察する。その際、移植した動物の 50%に腫瘍が出来る用量（TPD50： tumorproducing dose at the 50% end-point）1 を算出しておくことも有用である。TPD50 値は陽性対照
細胞の造腫瘍性を定量的に示す指標であり、製品細胞中の形質転換細胞の造腫瘍性を議論する際の比較対象となる。試験動物の数は、移植行為の難易度や試験動物の生存率等を考慮した上で設定する。１群につき最終評価可能な匹数として 10 匹以上で実施することが望ましいが、１群につき最終評価可能な匹数として最低でも６匹以上で実施すれば、定量的測定
項目におけるデータのバラツキが母集団のバラツキを概ね反映していると考えられる。
製品細胞と同時に投与する培地として、製品細胞の増殖又は生存に適した培地を使用する場合には、その培地でも陽性対照細胞の造腫瘍性が保持されていること又は増殖が阻害されないことが確認される必要がある点に注意する。陽性対照細胞の増殖に適した培地を使用する場合は、製品細胞中に混在する可能性のある形質転換細胞の中には、その培地が生存や増殖に適さないものもありうることに注意する必要がある。
製品細胞の移植では、実際の臨床応用時の細胞用量を勘案し、移植行為自体もアーチファ
クトが生じない範囲で、できるだけ多くの製品細胞を移植することが望ましい。腫瘍が観察されなかった場合は、被験製品から得られた結果が偽陰性である確率を、陽性対照細胞のTPDmin における腫瘍形成確率をもとにして求めておくこと。なお、TPDmin 以上の混在がな
いことを統計学的確からしさとともに示すための匹数の設定方法も知られている 8。その他の技術的な詳細については、5.3.項を参考にすること。なお、造腫瘍性を持つ形質転換細胞の混在を評価することが目的の場合には、試験系の精度向上のために片性の動物のみを使用することも許容されうる。また、陰性対照群については、陰性対照細胞となるヒト二倍体細胞の入手と利用の可能性を勘案して、その設定の可否を検討する。
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本試験はあくまで、中間製品又は最終製品における造腫瘍性細胞の混在の有無を評価するものであって、ヒトでの腫瘍化を直接評価する試験ではないことを認識しておく必要がある。また上記は、最も厳密に製品中の形質転換細胞の混在を評価する場合の例である。invivo 試験は in vitro 試験の結果を十分踏まえた上で計画することが望ましい。 in vitro 試験
での結果を踏まえた上で、念のため、in vivo で確認しようとする場合などには、in vitro 試験
での検出感度、精度などを考慮し、目的に沿う内容と程度でもよい。なお、形質転換細胞の造腫瘍性に対して移植部位の微小環境が影響を与えることが知られている 20,21。したがって、
例えば背部皮下移植試験を行う場合、皮下移植以外の投与での臨床使用が想定されている製品については、背部皮下移植では腫瘍を形成しない形質転換細胞の存在の可能性を考慮したうえで製品のリスク評価を行うこと。もし得られれば、特定のヒトがん細胞種の動物体内への移植試験（PDX： Patient-Derived Xenograft）に関する文献情報なども参考とする。
5.3. 最終製品細胞のヒトにおける生着部位での腫瘍形成能を評価するための試験
最終製品の造腫瘍性を評価するにあたって主に必要な情報としては、①未分化ヒト ES/iPS
細胞の混在量、②形質転換細胞の混在量に加え、③生着部位での投与細胞の腫瘍形成能、が挙げられる。①、②については、多能性幹細胞の分子マーカーの検出、不死化細胞の検出や足場非依存性増殖細胞の検出などでそれぞれ評価が可能である。また、5.2.1.2.及び 5.2.2.2.
で示したような in vivo 試験も考えられる。一方、③生着部位での投与細胞の腫瘍形成能については生着部位での in vivo 造腫瘍性試験を行う以外に評価方法はない。その場合に考慮すべき点としては、a) 試験動物の選択、b) 対照細胞の選択・試験系の検出能力、c) 試験動
物の数、d) 試験検体の投与部位と検体中の細胞数及び検体の形態、e) 観察期間、f) 投与部位の観察、g) 投与部位の組織学的評価、投与ヒト細胞の同定や生着していたことの確認、分化度を示す組織学的評価、h) 結果の解釈法などが挙げられる。特に投与部位は、可能な範囲でヒトでの投与部位に相当する部位を選択することを考慮する。これは、生着部位の微
小環境の違いによって腫瘍形成能や、腫瘍のタイプが異なるおそれがあり 20,21、ヒトへの外挿性を考えるときに問題となる可能性があるためである。もし、物理的障害を生ずるなどの理由により当該部位に対する投与細胞数に限界がある場合には、可能であれば投与部位を変更するのではなく、動物とヒトとの間の当該投与部位の相対的スケール比に応じた投与
細胞数の調節などを検討する。すなわち、生着する微小環境と投与細胞との相互作用による腫瘍形成の可能性を考察することを優先する。免疫特権、炎症、虚血など、特殊な投与環境における細胞の挙動はモデル動物における in vivo での試験が意義のある情報を提供する可能性が高いと考えられるからである。ただし、前臨床段階での試験結果のヒトへの外挿性を検討するときには、ヒト体内局所微小環境を形成する液性因子や受容体タンパク質等の要
素はそれぞれ高いヒト特異性を示し、生着部位の微小環境が動物においてどの程度モデル化できているかが不明であることにも留意する。

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5.3.1. 試験動物の選択
ヒト細胞加工製品を安定的に体内で生着させるための免疫不全動物としては、NOG マウ
ス 6、NSG マウス 7 などの重度免疫不全マウス系統が挙げられる。これらのマウスは T 細
胞、B 細胞及び NK 細胞を欠失しており、ヌードマウスと比べてヒトの細胞や組織の生着性が高い 8,9,10。BRG マウスも T 細胞、B 細胞及び NK 細胞を欠失した系統だが、ヒト造血幹細胞の生着性が NOG マウスや NSG マウスよりも低いことが知られているため 11,12、使用時には目的などを勘案して選定することが必要である。
T 細胞と B 細胞を欠失した SCID マウスや NOD/SCID マウスは、頻繁に胸腺腫を自然発症することが知られており、結果の解釈に影響を与える恐れがあるため使用を推奨しない。
なお、48 週齢未満の NOG マウスは腫瘍を自然発症することは稀である 22。免疫特権、炎症、虚血など特殊な投与環境における細胞の挙動が問題となる場合は、疾患モデル動物の使用も考慮する。この場合、疾患モデル動物がどれだけ適応症となる疾病の病態的特徴を代表しているかの事前の検討も必要となる。ただし、有用性が評価された疾患モデル動物を用いた試験系は、有効性の試験評価には有用であるが、免疫抑制剤の長期投与が必要であり、安定した長期間の試験系で一定の統計学的結論を出す造腫瘍性試験には評価が難しく不向きな場合がある。したがって、試験目的等も勘案して疾患モデル動物を採用するかどうかを決定すべきである。実際、前述の理由から、造腫瘍性試験においては、疾患モデル動物ではなくヒト細胞の移植が容易な免疫不全動物を用いることが多い。NOG や NSG ほど免疫状態が抑制されている系統が利用可能な動物種はマウスの他にはないが、マウスでは投与部位のサイズが小さすぎる又は疾患モデルを作製することが困難などの問題がある。その場合、T 細胞が欠失しているヌードラットなど、マウスよりも大型の免疫抑制動物が用いられることがある 10,14,23。さらに大きな動物の場合は、強く免疫が抑制された個体を入手することが難しいため、免疫抑制剤を併用することになるが、短期のうちに効力や性能を裏付けるデー
タを得る試験には利用可能でも、造腫瘍性試験のような時間を要する試験には不向きである。
5.3.2. 対照細胞の選択
免疫不全動物を用いた in vivo 造腫瘍性試験では、製品細胞又は陰性対照細胞となるヒト
二倍体細胞に陽性対照細胞をスパイクした陽性対照群が設けられていることが望ましい。
陽性対照細胞の種類は、製品中に含まれている造腫瘍性細胞として何を想定するかによって異なる。製品中に含まれている造腫瘍性細胞の特性が予め推定されており、かつこれに類似する表現型を示す細胞株が利用可能な場合には、その細胞株を選択する。そのような細胞株が利用可能でない場合は、腫瘍形成能が良く研究され認知されている HeLa 細胞等を陽性
対照細胞として使用する。なお、陽性対照細胞には、適切に品質管理された細胞提供機関から入手した細胞株を使用することが望ましい。陽性対照群として造腫瘍性を示す中間製品を用いる場合には、当該中間製品中の造腫瘍性細胞の量を別途、in vitro 試験法等により確10

認することが必要である。陽性対照群が設定できない場合には、試験結果が陰性であっても真の陰性なのか偽陰性なのかの評価が困難になる点、つまり、期待する性能の試験が実施できたのか、及び試験結果によってどのような評価が可能であるのかという点を説明する必要が生じることに留意し、造腫瘍性試験の実施の意義を検討する。陰性対照群については、
陰性対照細胞となるヒト二倍体細胞の入手と利用の可能性を勘案して、その設定の可否を検討する。
未分化 ES/iPS 細胞は混在せず、一方、混在が想定される形質転換細胞の特徴が明らかで、
適切な陽性対照形質転換細胞がある場合は、その評価試験を生着部位で実施して TPD50、
TPDmin 及びその腫瘍検出期間を設定した上で、製品細胞の生着部位への移植を実施することが肝要であるが、そのような例は稀であると考えられる。製品中に含まれている造腫瘍性細胞の特性が事前に不明である場合には、試験結果の解釈は、あくまで混在造腫瘍性細胞の造腫瘍性を陽性対照細胞と同等と仮定した上でなされるものであることに注意すること。
5.3.3. 試験動物の数と性別試験動物の数は、移植行為の難易度や試験動物の生存率等を考慮した上で設定する。１群につき最終評価可能な匹数として 10 匹以上で実施することが望ましいが、１群につき最終評価可能な匹数として最低でも 6 匹以上で実施すれば、定量的測定項目におけるデータのバラツキが母集団のバラツキを概ね反映していると考えられる。陽性対照群の TPDmin 以上の混在がないことを統計学的確からしさとともに示すための匹数の設定方法も知られている 8。最終製品細胞のヒトにおける生着部位での腫瘍形成能を評価するための試験では、原則として１群に雌雄の動物が同数含まれるようにした方が性差の影響評価は行いやすくなる。ただし、臨床適用が一方の性のみに限定されている場合等、投与製品の腫瘍形成能において性差の影響が無視できる場合には片性で実施しても構わない。
5.3.4. 試験検体の投与部位と検体中の細胞数及び検体の形態動物を用いた低分子医薬品の非臨床安全性試験における検体投与量は一般に、種差と個体差を考慮した不確実係数（安全係数）を加味し、ヒトへの投与量以上に設定される。しかし、ヒト細胞加工製品の in vivo 造腫瘍性試験の場合、動物のサイズの制約から、ヒトへの投与量と同数又はそれ以上の数の細胞を投与することが困難な場合が多い。もし、物理的障害を生ずるなどの理由により、ヒトでの投与時と同様の部位に同様の経路で投与する細胞数に限界がある場合には、可能であれば投与部位を変更するのではなく、動物とヒトとの間の当該投与部位の相対的スケール比に応じた投与細胞数の調節などを行う。すなわち、生着する微小環境と投与細胞との相互作用による腫瘍形成の可能性を考察することを優先する。
相対的スケール比としては面積比や体積比などが考えられるが、どの比率を選択するかは、製品の構造、剤形や、その適用方法の特徴をもとに製品ごとに説明されるべきものである。
部位を優先する理由は、免疫特権、炎症、虚血など、特殊な投与環境における細胞の挙動は
11

モデル動物における in vivo での評価でなければ、考察することが困難だからである。ただし、ヒトでの投与部位に相当する部位への投与が技術的に困難な場合、試験結果の解釈が困難である場合、別の部位に投与する方が手技や感度などの試験性能面で優れることが明らかな場合など、合理的に妥当性が説明できる場合にはこの限りではない。投与検体の形態は、可能であれば最終製品の構造又は剤形と同様のものとする。
5.3.5. 観察期間
各群の全例について、一般状態を毎日観察し、週１回以上の頻度で体重測定すると同時に製品細胞が投与された部位の腫瘍形成の有無の確認を、観察や触診、画像診断などの方法により実施することが望ましい。ただし、実際の観察頻度及び確認項目は、移植部位、麻酔や撮像時間などの動物への負荷を考慮した上で設定すること。観察期間の長さは、陽性対照群の有無や移植細胞及びその分裂により生じた細胞の体内での推定生存期間などによって異なる。陽性対照細胞を最終製品又は同じ細胞種の正常細胞のような陰性対照細胞にスパイクした陽性対照群のある場合は、試験時又は事前検討において、陽性対照群の中で腫瘍形成が認められる TPDmin を確認すること。TPDmin における腫瘍形成確率が一定値に達する時点
を十分超えた時点まで観察することにより、造腫瘍性の有無を判断することができる。この場合の判断は、混在しうる造腫瘍性細胞の造腫瘍性が陽性対照細胞と同等であり、腫瘍形成に必要な最低用量が TPDmin であると仮定した上でのものとなる。NOG マウスに皮下投与した場合には、ヒト iPS 細胞や HeLa 細胞の腫瘍形成率は、4～6 か月でほぼ安定になることが知られているが 8,10,13,14、手技や細胞の取り扱い、培養履歴などにより、腫瘍形成率が安定するまでに要する時間はばらつくので、TPDmin における腫瘍形成確率が一定値に達するまでの期間は、試験施設において確認する必要がある。
陽性対照群がある場合でも、最終製品中の細胞の遺伝的安定性が低いことが明らかな場
合など、投与後に生着部位において投与された細胞が形質転換することにより腫瘍が形成されることが強く懸念される場合には、より長期の観察が必要になると考えられる。ただし、動物の寿命もあり、観察の延長にも限界がある 24。したがって、より長期の観察によっても腫瘍形成が認められなかったとしても、臨床投与後の形質転換による腫瘍形成の可能性については、例えばフォローアップ及び外科的切除や薬剤治療などによるリスクマネジメン
トのプランを予め講じておくことが重要である。
陽性対照群の設定をせずに試験する場合は、最終製品細胞の投与後から動物が死亡するまでの期間、自然発生病変や寿命が評価に影響を与えない最長期間又は移植細胞及びその分裂により生じた細胞が確認できなくなるまでの期間、腫瘍形成の有無を観察することが望ましい。
陽性対照群の有無の他に、動物種、系統、病態、免疫抑制状態なども勘案し、合理的に説明可能な観察期間を設定すること。

12

5.3.6. 投与部位の観察
投与部位に腫瘤の形成が確認された場合には、その検出日を記載する。皮下等の外観により腫瘤形成の確認が可能な場合は、その短径と長径を最低 1 週間に 1 回の頻度で測定し、腫瘤の成長を評価することが望ましい。ただし、実際の測定は、麻酔や測定時間などの動物への負荷を考慮した上で計画し、実施する。
腫瘤の成長が過度な場合には、動物福祉の観点から、動物を定められた方法により安楽死させる。腫瘤の退縮が認められる場合には、定められた観察期間終了までは安楽死させないこと。腫瘤の成長が認められない場合には、即座に腫瘍とは判断しないこと。
5.3.7.病理学的評価
観察期間終了時に、すべての動物を安楽死させ、投与部位及び形成された腫瘤について剖検を行う。肉眼的に認められた腫瘤組織に加えて血流が豊富な主要臓器（肝臓、脾臓、腎臓、肺、リンパ節など）を摘出し、腫瘤組織については、HE 染色や免疫染色等で、ヒト由来細胞がどのような組織の腫瘍を形成したか確認する。また、摘出した他の臓器については目視
で腫瘤の有無を確認する。ヒト細胞の浸潤・遠隔転移がないかを、ヒト細胞遺伝子に特異的な Alu 配列に着目した Alu PCR25,26 や抗ヒト HLA 抗体等を用いた免疫染色等で評価することも有用である。この際には、評価方法の性能（例えば感度や特異性など）は事前に確認しておく必要がある。摘出した組織は全て保存する。一方、観察期間中に腫瘤が観察されなかった場合でも、偽陰性の判定を防ぐため、移植した細胞製品を摘出し移植したヒト細胞の組織像を検討する。その際、病理組織学的検査によって、移植細胞が移植片摘出前まで生存していたこと、腫瘍形成能がないこと、及び製品の使用目的に適った組織像であることを適切な免疫染色法の組みあわせで証明することが肝要である。なお、前述と同様に、血流が豊富な主要臓器（例えば肝臓、脾臓、腎臓、肺、リンパ節など）を摘出し、後日必要となる解析のため保存しておく。
5.3.8. 結果の解釈
製品細胞投与群において腫瘍形成が認められた場合には、腫瘍を構成する細胞がヒト由来の細胞であるか否かについて明らかにするとともに、製品中の造腫瘍性細胞の混在量を確認しつつ、製品の製法や品質規格の変更を検討すること。製品細胞投与群において腫瘍形成が認められなかった場合には、偽陰性の可能性について、陽性対照細胞の TPDmin 値などから考えられる in vivo 造腫瘍性試験の性能を踏まえて考察する 8。がん細胞などの造腫瘍性形質転換細胞は多様性に富み、in vivo 造腫瘍性試験では検出されにくい細胞種がある可能性がある。したがって、もし得られれば、特定のヒトがん細胞種の動物体内への移植試験（PDX：Patient-Derived Xenograft）に関する文献情報なども参考とする。試験結果の解釈は、あくまで混在造腫瘍性細胞の造腫瘍性を陽性対照細胞と同等と仮定した上でなされるもの
であることに留意すること。
13

６．ヒト体細胞／体性幹細胞加工製品のための造腫瘍性関連試験
6.1. 原料・原材料の品質特性評価・品質管理のための造腫瘍性試験
ヒト体細胞／体性幹細胞加工製品を製造するための細胞基材（原料又は原材料）としてヒ
ト体細胞又はヒト体性幹細胞のセル・バンクを樹立した際に、その品質特性評価を目的として造腫瘍性試験を行う場合には、WHO TRS 978 の Annex 31 を参考にすること。
6.2. 最終製品のための造腫瘍性関連試験の留意点
最終製品としてのヒト体細胞／体性幹細胞加工製品の造腫瘍性に関しては、形質転換細胞の混在量と、生着部位での投与細胞の腫瘍形成能について、試験データ又は文献等の情報をもとに検討する必要がある。
既に世界各地でヒト細胞の移植医療やヒト体細胞／体性幹細胞加工製品の臨床応用が進んでいる。しかし、これらの細胞移植や製品投与が原因となり腫瘍が形成されたことを示す
症例報告は、ヒト胎児由来培養神経幹細胞を用いた毛細血管拡張性運動失調症の治療により脳に良性の腫瘍が形成されたという報告 27、脊髄損傷治療を目的とした自己由来嗅粘膜（細胞の加工なし）を移植した後の腫瘤形成事例 28、いわゆる「幹細胞ツーリズム」の一環としてクリニックで間葉系幹細胞、ES 細胞及び胎児由来神経幹細胞の髄腔内投与を受けたとされる虚血性脳卒中患者の脊髄における腫瘍形成事例 29 など限られたものしかない。な
お、非常に稀ではあるが、ドナーにおける血液腫瘍リスクの上昇が認められないにもかかわらず、同種由来造血幹細胞移植後に患者がドナーの細胞に起因する白血病を発症することがあることも知られている 30。再生医療・細胞治療に汎用されるヒト間葉系幹細胞を原料とした製品に限れば、臨床での単独投与による腫瘍形成の報告は存在しない。過去にヒト間葉系幹細胞の in vitro 培養時の悪性形質転換が４件報告されているが、このうち 2 件 31,32 はがん細胞株のクロスコンタミネーションによるものであることが後に判明している。また、残りの２件 33,34 では in vitro 培養時に細胞の不死化が確認されている。これらのことは、最終製品への造腫瘍性細胞のクロスコンタミネーション防止及び細胞増殖特性の把握が重要であることを示している。したがって、GCTP 省令に準拠した工程管理の下に培養・加工され、既定の培養期間を超えた細胞の増殖特性解析で異常がないことを確認したヒト体細胞／間葉系幹細胞加工製品については、一般的には免疫不全動物を用いた in vivo 造腫瘍性試験を行う必要はない。
ただし、①最終製品中の細胞の増殖性や未分化度が高い、過去に腫瘍形成が報告された製品に含まれていた細胞種若しくはそれと同様の細胞が投与製品中に含まれるなどの理由により投与後に生着部位において腫瘍が形成されることが非常に強く懸念される場合、②最終製品を非相同的に使用する場合、又は③共通のヒト由来の原料細胞から製造された製品が多くの患者に投与されることにより腫瘍形成リスクが拡散するおそれがある場合には、既定の培養期間を超えた細胞の増殖特性解析等の試験に加え、免疫不全動物を用いて上記
14

5.3 項と同様の造腫瘍性試験の実施を検討すること。
７．遺伝的安定性に関する一般的留意点
遺伝的安定性の低下は、核型異常や遺伝子変異の発生確率を上昇させることを通じて形
質転換細胞の発生確率を上昇させると推定されることから、造腫瘍性リスクに関する潜在的ハザードである。
ヒト細胞では、培養により核型変化などの遺伝子変異が生じることが知られている。核型が安定しているヒト二倍体線維芽細胞でさえも一塩基遺伝子多型（以下「SNP」という。
）
アレイによる解析では若干の変異を示し、また、非二倍体の核型が、明らかな正常組織においても時々観察されることがある。in vitro で観察される核型異常細胞など遺伝子変異を持
つ細胞の安全性に関してはまだ結論は出ていない。遺伝的安定性のベースラインとなる遺伝子情報は、細胞種や培養方法によって異なる。継代培養において遺伝子複製の絶対的安定性を示す細胞は無い。したがって、ハザードである遺伝的不安定性を最小限にするため培養期間及び継代回数を制限し、培養条件の方法や変更の影響に対するリスク評価を行うべきである。
遺伝的安定性試験法として、G バンド核型解析、FISH、アレイ CGH、SNP アレイ、次世
代シークエンサーなどによる解析が挙げられる。G バンド核型解析は、一細胞の染色体数の変化、転座やその他の再構成を確かめることができる。この手法により、一定の継代数又は分裂数ごとに、核型が二倍体で保たれていることを示すのは、大まかな遺伝的安定性の指標として有用である。アレイ CGH はより狭い遺伝子領域のコピー数変化を検出できるという点で利点を有する。FISH や次世代シークエンサーによる情報については、遺伝子変化（変異のタイプとそのアリル頻度）に対する検出感度と適切なコントロールの入手可能性を課題として検討しつつ、造腫瘍性との関連性について科学的検証を進め、試験法として利用することの妥当性を評価すべきである。なお、性能の妥当性が示されるならば、次世代シークエンサーによる簡易染色体検査（digital karyotyping）は、日数がかかり定量性に欠ける点が問題とされる G バンド核型解析を代替することができるかもしれない。
概して、これらの試験は製品細胞の特性解析として有用であるが、現時点では出荷基準というよりも細胞の特性等に関する参考情報を得るという目的で実施されるものである。

15

＜参考文献＞
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18

表１

混在する未分化 ES/iPS 細胞の検出・定量法
in vivo 造腫瘍性試験

試験法（マトリゲルとともに NOG マウスにフローサイトメトリー

qRT-PCR

造腫瘍性細胞の検出

未分化な多能性幹細胞の検出

未分化な多能性幹細胞の検出17~30 週間

1日

約 6 時間皮下投与）
目的
試験期間・分析
時間（斜字）

利点

欠点・留意点

直接的

短時間

迅速

臨床適用相当部位への移植により微個々の細胞を解析し、マーカー分子

高感度

小環境での造腫瘍性を評価可能の発現量を評価可能
簡便

簡便

費用と時間がかかる

間接的

間接的

専用動物施設が必要

ゲーティングが結果に影響

個々の細胞でのマーカー分子発現レ

スループットが低い

ベルは評価できない腫瘍の由来が形質転換細胞か多能性幹細胞かを区別するには、病理的評価等が必要検出能力又は検出限界（下線）
出典

hRPE2.5 × 105 個中に 1,000 個（0.4%）

hRPE 中の 0.1%のヒト iPS 細胞

hRPE 中の 0.002%以下のヒト iPS 細胞の割合で混在するヒト iPS 細胞を 50%の（マーカー：TRA-1-60）（マーカー：LIN28）

確率で検出
Kanemura et al., Sci Rep. 2013

Kuroda et al., PLoS ONE. 2012

Kawamata et al., J Clin Med. 201519

Kuroda et al., PLoS ONE. 2012

表１（続）

混在する未分化 ES/iPS 細胞の検出・定量法

試験法

Droplet Digital PCR

GlycoStem-HP 法

Essential-8/LN521 培養増幅法

目的

未分化な多能性幹細胞の検出

未分化な多能性幹細胞の検出

未分化な多能性幹細胞の検出

試験期間・分析

約 6 時間時間（斜字）

利点

欠点・留意点

3 時間以下

約 1 週間（培養上清回収から測定まで）迅速

細胞非破壊的

直接的

簡便

簡便

簡便

高感度

高スループット

残存 iPS 細胞の特性解析が可能

間接的

間接的

時間がかかる

個々の細胞でのマーカー分子発現

個々の細胞でのマーカー分子発現

スループットが低い

レベルは評価できない

レベルは評価できない
培地成分が結果に影響

検出能力又はヒト心筋細胞中の 0.001%のヒト iPS 細胞

HEK293T 細胞中の 0.05%のヒト iPS 細胞（マーカー：LIN28）（マーカー：H3+ポドカリキシン）検出限界（下線）

hMSC 中の 0.01~0.001%のヒト iPS 細胞

ヒト胚葉体中の 0.1~0.01%のヒト iPS 細胞

出典Kuroda et al., Regen Ther. 2015

Tateno et al., Sci Rep. 2014

20

Tano et al., PLoS ONE. 2014

表２

混在する形質転換細胞の検出・定量法
in vivo 造腫瘍性試験

試験法（マトリゲルとともに NOG マ

軟寒天コロニー形成試験

ウスに皮下投与）
目的
試験期間

利点

造腫瘍性細胞の検出

デジタル
軟寒天コロニー形成試験

細胞増殖特性解析

足場非依存的増殖

足場非依存的増殖

不死化細胞（悪性形質転換細胞）の検出（悪性形質転換細胞）の検出（形質転換細胞）の検出

3~4 週間

3~4 週間

4 週間以上16 週間以上
直接的

安価

高感度

安価

高感度

悪性形質転換細胞を単離・特悪性形質転換細胞を単離・特簡便臨床適用相当部位への移植性解析できる性解析できる

悪性形質転換細胞以外の不により微小環境での造腫瘍

死化細胞も幅広く検出性を評価可能欠点・
留意点

費用と時間がかかる

造腫瘍性細胞の有無は間接造腫瘍性細胞の有無は間接造腫瘍性細胞の有無は間接専用動物施設が必要

的に判断

的に判断

的に判断

腫瘍の由来が形質転換細胞

浮遊系細胞には使えない

浮遊系細胞には使えない

悪性形質転換細胞の有無をか多能性幹細胞かを区別す

悪性形質転換細胞以外の不イメージスキャナーが高価

区別できないるには、病理的評価等が必要

死化細胞は検出不能

悪性形質転換細胞以外の不in vivo 造腫瘍性を示さない

死化細胞は検出不能

不死化細胞は検出不能
検出能力 hMSC に 1/106（0.0001％）の割合 hMSC に 1/103（0.1％）の割合で hMSC に 1/107（0.00001％）の割 hMSC に 1/106（0.0001％）の割合
又はで混在する HeLa 細胞（10 個）を 混在する HeLa 細胞（計算上の検 合で混在する HeLa 細胞

検出限界 17%の確率で検出可能

出限界は 0.02％）

来幹細胞に 1/105（0.001％）の割合
で混在する不死化脂肪由来幹細胞

（下線）

出典

で混在する HeLa 細胞及び脂肪由

Kusakawa et al., Regen Ther. 2015 Kusakawa et al., Regen Ther. 2015

Kusakawa et al., Sci Rep. 2015

Kono et al., Biologicals. 2015&2017
Hasebe-Takada et al., Regen Ther. 2016

21

＜参考情報 1＞混在する未分化 ES/iPS 細胞の検出法としての in vivo 造腫瘍性試験
出典：Kanemura et al. Tumorigenicity studies of induced pluripotent stem cell (iPSC)-derived retinal
pigment epithelium (RPE) for the treatment of age-related macular degeneration.
PLoS ONE. 2014;9:e85336.

【方法】
1. 細胞培養
皮膚線維芽細胞にレトロウイルスpMXs-POU5F1、-Sox2、-c-Myc、-Klf4を導入して作製されたヒトiPS細胞株201B7は、SNLフィーダー細胞上で5 ng/mL bFGFを含むReproFF2培地を用いて維持培養する。細胞株836B1は健常人から採取した皮膚線維芽細胞から樹立された。
細胞株59、K11、 K21、 101、RNT9又はRNT10は、同意を得た6名の光受容体特異的遺伝子変異を伴う網膜色素変性症患者の皮膚線維芽細胞に由来する。皮膚線維芽細胞から、
POU5F1、SOX2、KLF4、MYCL、LIN28A及びGLIS1（iPS細胞株59-G、K21-G、101-G、RNT9、
RNT10）又はPOU5F1、SOX2、KLF4、MYCL、LIN28A及びp53shRNA（iPS細胞株101-EV、
K11-EV、K21-EV）が挿入されたENBAエピソーマルベクターにより、iPS細胞を樹立した。
これらのiPS細胞は、自己線維芽細胞由来フィーダー細胞上で、5 ng/mL bFGFを含むprimate
ES培地を用いて維持培養する。iPS細胞由来網膜色素上皮（RPE）細胞クローン（59-G3 RPE、
K21-G18 RPE、101-G25 RPE、RNT9 RPE、RNT10 RPE、101-EV RPE、K11-EV9 RPE又はK21EV15 RPE）は、RPE維持培地［B-27サプリメント、2 mM L-グルタミン、 0.5 nM SB431542
及び10 ng/mL bFGFを含むDulbecco’s Modified Eagle’s Medium: Ham's F12 Medium（7: 3）］で維持培養する。ヒト初代培養RPEは、L-グルタミン、GA-1000及びbFGFを含むRetinal Pigment
Epithelial Cell Basal Mediumで維持培養する。浮遊培養したヒトiPS細胞由来RPE細胞は、皮下投与又はコラーゲンゲル上に捲いてコラーゲンで架橋させたRPE細胞シート作製に用いる。RPE細胞シートは、10%ウシ胎児血清（FBS）とHam's F10培地で4週間、RPE維持培地で3週間維持培養した後に、コラゲナーゼIでコラーゲンゲルから剥離させる。RPE細胞シート
は、懸濁細胞とマトリゲルを混合し皮下投与又はレーザーマイクロダイセクションにより断片化し動物の網膜移植に用いる。

2. 動物実験
2.1 マウス皮下移植
様々な投与量のHeLa細胞を、200 µLのマトリゲルと混合又は200 µLのPBS（マトリゲルなし）に懸濁し、7〜8週齢の雌性ヌードマウス（BALB/cAJCl-nu/nu）、SCIDマウス（C.B-17/Icrscid/scidJcl）、NOD-SCIDマウス（NOD/ShiJic-scidJcl）又はNOGマウス（NOD/ShiJic-scid、
22

IL-2RγKO Jic）の皮下組織に、26G注射針を付けた1 mLシリンジを用いて注射する。動物は36週間モニターする。実験の終わりにマウスを安楽死させ、腫瘍を採取し、4%パラホルム
アルデヒドで固定する。パラフィン切片は、病理学的な観察のためHE染色する。様々な投与量のヒトiPS細胞201B7又は1 x 106個のヒトiPS細胞由来RPE細胞を、200 µLのマトリゲルと混合又は200 µLのPBS（マトリゲルなし）に懸濁し、7〜8週齢の雌性NOGマウスに、26G
注射針を付けた1 mLシリンジを用いて皮下投与し、6〜15ヶ月観察する。実験の終わりにマ
ウスを安楽死させ、移植片をピンセットで採取し、4%パラホルムアルデヒドで固定する。

2.2 ラット網膜下投与
3週齢雌性ヌードラット（F344/NJcl-rnu/rnu）を、ケタミン100 mg/kgとキシラジン10 mg/kgとの混液の腹腔内投与により麻酔する。散瞳薬（0.5%トロピカミド、0.5%フェニレフリン塩酸塩）により右眼の瞳孔を拡大する。27G注射針を用いて右眼隅の強膜を小さく切開する。
その後、様々な濃度のHeLa細胞、ヒトiPS細胞又は2 µLのDMEM/F12培地に浸した1 mm四方のヒトiPS細胞由来RPE細胞シートを、33G注射針の付いたハミルトンシリンジを用いて、強膜切開部から網膜下スペースに注射する。細胞又はRPE細胞シートは、外科用顕微鏡下で拡大した瞳孔を通してハミルトンシリンジの位置を確認しながら、網膜下の毛細血管集網に移植する。網膜下の毛細血管集網は、アルビノのヌードラットにおいて容易に観察でき、網膜下スペースの目印として使う。移植したヌードラットは8〜82週間モニターする。実験の終わりにラットは安楽死させ、移植した全眼球を採取し、4%パラホルムアルデヒドで固定する。

3. RT-PCR及び定量RT-PCR
総RNAはキットにより抽出し、混在するゲノムDNAはスピンカラム処理により除去する。
PrimeScript RT Master MixとPrimeSTAR MAX DNA Polymeraseを用いて、50 ngの総RNAから
cDNAを作製する。定量PCRはSYBR Greenを用いて行い、遺伝子発現量はGAPDHで補正す
る。定量RT-PCRはQuantiTect Probe RT-PCR Kitを用いて行う。標的遺伝子の発現量は、RNase
P転写産物により補正する。定量RT-PCRは、45サイクル行う。本実験で用いるプローブとプライマーの配列は、表.プローブとプライマーの配列（参考情報１）に記載する。

4. Alu PCR
ヒト細胞特異的なAlu配列をプライマーのデザインに用いる。PCR反応（28サイクル）に、
Aluプライマー5´-AAGTCGCGGCCGCTTGCAGTGAGCCGAGAT-3´、50 ng DNAテンプレー
ト及びPrimeSTAR Max DNA Polymeraseを用いる。ヒトHeLa細胞 DNA：マウスNIH3T3 DNA
23

が様々な割合のDNAテンプレートを、Alu PCRの検出感度を決定するために用いる。PCR産物は1%アガロースゲルを用いた電気泳動で分離し、その画像はデジタル化して取り込む。

5. 免疫組織化学
移植した組織は 4%パラホルムアルデヒドで固定する。パラフィン包埋した組織切片は、HE 染色する。その後、パラフィン切片は脱パラフィン化のため、キシレンで処理し、100%、
95%、80%、70%エタノールで各々5 分間ずつ連続して処理を行う。切片は 10 mM クエン酸
（pH 6）で 95˚C、50 分間処理し、0.4%Triton-X100/PBS で室温、30 分間処理する。脱パラ
フィン化切片は、抗ヒト Lamin-A 抗体、抗 BEST1 抗体及び抗 Ki-67 抗体で染色する。核は、
Hoechst 33258 又は DAPI で染色する。浮遊状態のヒト iPS 細胞由来 RPE 細胞は、4%パラホ
ルムアルデヒドで固定し、抗 POU5F1（OCT3/4）抗体又は抗 BEST1 抗体で染色する。抗体
は、Alexa Fluor 488 goat anti-mouse 又は Alexa Flour 488 goat anti-rabbit を用いて可視化する。
蛍光顕微画像は、蛍光顕微鏡により取り込む。

24

表.プローブとプライマーの配列（参考情報 1）
Primers for RT-PCR
GeneForward primer sequence (5'→3')

Reverse primer sequence (5'→3')

LIN28ACACGGTGCGGGCATCTG

CCTTCCATGTGCAGCTTACTCPOU5F1GAAACCCACACTGCAGCAGA

TCGCTTGCCCTTCTGGCG

BEST1

ATCAGAGGCCAGGCTACTACAG

TCCACAGTTTTCCTCCTCACTTCRALBPGACTGGGGTTAAATCTCACAGCTGACATGTTGCCTATGGAAGACPAX6TTAACACACTTGAGCCATCACC

AAATCTCGGATGTCTGTCCACT

TYR

AGCCCAGCATCATTCTTCTCGGCGTTCCATTGCATAAAGAGAPDHCGATGCTGGCGCTGAGTAC

CCACCACTGACACGTTGGC

GeneProbe sequence (5'→3')

Forward primer sequence (5'→3')

Reverse primer sequence (5'→3')

LIN28ACGCATGGGGTTCGGCTTCCTGTCCCACGGTGCGGGCATCTG

CCTTCCATGTGCAGCTTACTCPOU5F1CGGACCACATCCTTCTCGAGCCCAAGCGAAACCCACACTGCAGCAGA

TCGCTTGCCCTTCTGGCG

Probes and primers for qRT-PCR

25

＜参考情報 2＞混在する未分化 ES/iPS 細胞の検出法としての qRT-PCR
出典：Kuroda et al. Highly sensitive in vitro methods for detection of residual undifferentiated cells
in retinal pigment epithelial cells derived from human iPS cells.
PLoS ONE. 2012;7(5):e37342【方法】
1. Total RNA 抽出
キットに添付されているプロトコールに従って、サンプルとなる細胞（iPS 細胞を分化させた細胞など）から総 RNA を抽出し、DNase 処理を行う。
2. 定量 RT-PCR
2.1 PCR mixture を QuantiTect Probe RT-PCR Kit を用いて以下のように調製する。
a)

PCR mixture（LIN28）
Final conc.

Assay/well (µL)

QuantiTect RT Mix

1×

0.25

2 × QuantiTect Probe RT-PCR Master Mix

1×

12.5

100 µM Forward Primer

0.4 µM0.1

100 µM Reverse Primer

0.4 µM

0.1

20 µM Probe

0.1 µM

0.125

RNAase free water-

6.93
Total 20b)

PCR mixture（GAPDH）
Final conc.

Assay/well (µL)

QuantiTect RT Mix

1×

0.25

2 × QuantiTect Probe RT-PCR Master Mix

1×

12.5

10 µM Forward Primer

0.2 µM

0.5

10 µM Reverse Primer

0.2 µM

0.5

5 µM Probe

0.1 µM

0.5

RNAase free water-

5.75
Total 20

TaqMan® GAPDH Control Reagents (human)を使用
2.2 Total RNA 溶液を以下のように調製する。
a)

LIN28 測定用
・ 検量線用のテンプレートの調製
未分化 iPS 細胞由来 RNA 濃度を 3, 1, 0.3, 0.1, 0.03, 0.01, 0.003, 0.001, 0 ng/µL とな
26

るように RNase free water で希釈したものを調製する。
・ サンプル RNA の調製
サンプル RNA の濃度が 10 ng/µL になるように調製する。
b)

GAPDH 測定用
・ 検量線用のテンプレートの調製
未分化 iPS 細胞由来 RNA 濃度を 10, 3, 1, 0.3, 0.01, 0 ng/µL となるように RNase
free water で希釈したものを調製する。
・ サンプル RNA の調製
サンプル RNA の濃度が 1 ng/µL になるように RNase free water で希釈したものを調製する。

2.3 PCR 用 96 ウェルプレートに PCR mixture を 20 µL/ウェルずつ添加する。
2.4 テンプレート溶液を 5 µL/ウェルずつ添加する（よく混合する）。
2.5 リアルタイム PCR 装置にセットする。
定量 RT-PCR 条件
Stage

温度

時間

Stage 1

50.0℃

30 分

Stage 2

95.0℃

15 分

94.0℃

15 秒

60.0℃

1分

Stage 3

Stage 3 を 45 サイクル繰り返す．
（GAPDH は 40 サイクル）27

（サンプル A、B、C とする）

プレート配置図
GAPDH

LIN28

1

2

3

A

201B7

201B7

201B7

B

A

A

A

A

A

A

C

B

B

B

B

B

B

D

C

C

C

C

C

C

E

S10

S3

S1

S3

S1

S0.3

F

S0.3

S0.1

DW

S0.1

S0.03

S0.01

S0.003

S0.001

DW

G

4

5

6

7

8

9

10

11

12

201B7* 201B7* 201B7*

H*未分化マーカーを測定する 201B7 は 1 ng/µL で調製する（陽性対照）。
LIN28 probe、primer 配列
Gene

LIN28

Probe Primer set （5´ → 3´)Probe sequences（5´ FAM/3´ TAMRA）

CGCATGGGGTTCGGCTTCCTGTCC

Forward primer sequences

CACGGTGCGGGCATCTG

Reverse primer sequences

CCTTCCATGTGCAGCTTACTC

Primer は 100 µM、Probe は 20 µM に調製する。
注意点:ごく微量な LIN28 を検出した場合の判断基準として、Ct 値が 35 を超えた場合は未検出とする。（Ct 値>35 ではバラツキが大きくなるため）

28＜参考情報 3＞混在する未分化 ES/iPS 細胞の検出法としての Droplet Digital PCR
出 典 ： Kuroda et al. Highly sensitive droplet digital PCR method for detection of residual
undifferentiated cells in cardiomyocytes derived from human pluripotent stem cells.
Rege Ther. 2015;2:17-23.
【方法】
1. Total RNA 抽出
キットに添付されているプロトコールに従って、サンプルとなる細胞（iPS 細胞を分化させた細胞など）から総 RNA を抽出し、DNase 処理を行う。
2. Droplet digital PCR
2.1 PCR mixture を One-Step RT-ddPCR Kit for Probes を用いて以下のように調製する。
PCR mixture
Final conc.

Assay/well (µL)

1×

10

25 mM Manganese

1×

0.8

50 µM Forward Primer

0.75 µM

0.3

50 µM Reverse Primer

0.75 µM

0.3

50 µM Probe

0.25 µM

0.1

RNAase free water-

3.5

2 × One-Step RT-ddPCR Supermix

Total 15

2.2 Total RNA 溶液を以下のように調製する。
LIN28 測定用
・ 検量線用のテンプレートの調製
未分化 iPS 細胞由来 RNA 濃度を 0.1, 0.03, 0.01, 0.003, 0.001, 0 ng/µL となるように RNase free water で希釈したものを調製する。
・ サンプル RNA の調製
サンプル RNA の濃度が 10 ng/µL になるように調製する。
2.3 PCR tube に PCR mixture を 15 µL/ウェルずつ添加する。
2.4 RNA 溶液を 5 µL/ウェルずつ添加する。
（よく混合する）
2.5 Droplet Generator を用いて、ドロップレット作製を行う。
2.6 作成したドロップレット液を 96 ウェルプレートに移す。
2.7 RT-PCR 反応
サーマルサイクラー条件
29

Stage温度

時間Stage 1

60.0℃

30 分

Stage 2

95.0℃

5分

94.0℃

30 秒

64.0℃

1分

Stage 3

Stage 3 を 40 サイクル繰り返す。
Stage 498℃

10 分

2.8 PCR 反応液を QX100 Droplet Reader を用いて解析する。
LIN28 probe、 primer 配列
Gene

LIN28

Sequence（5´ → 3´）Probe sequences（5´ FAM/3´ BHQ1）

CGCATGGGGTTCGGCTTCCTGTCC

Forward primer sequences

CACGGTGCGGGCATCTG

Reverse primer sequences

CCTTCCATGTGCAGCTTACTC

Primer 及び Probe は、50 µM に調製する。
注意点・

プライマーによって至適アニーリング温度が異なるので、条件検討が必要。

・

閾値の設定により結果が大きく変化することに注意が必要。

30

＜参考情報 4＞培養上清を用いた非破壊での in vitro 造腫瘍性試験
出典：Tateno et al. A medium hyperglycosylated podocalyxin enables noninvasive and quantitative
detection of tumorigenic human pluripotent stem cells.
Sci Rep. 2014;4:4069.
【測定に必要なキット・機器】
・ヒトES/iPS細胞モニタリングキット
・遠心機（1,700 x gで遠心が可能な遠心機）
・試験管ミキサー・プレートミキサー（あれば好ましい）・96ウェルプレート洗浄機（あれば好ましい）・96ウェルプレートリーダー（吸光度測定：主波長 450 nm、副波長 600 nm ~ 650 nm）【注意】＜測定に関すること＞
・培地交換した翌日に培養上清をサンプリングし、その後に細胞を剥がしてヒト多能性幹細胞数を測定する。例えば培地が 5 mL、細胞数が 5 × 106 cells であった場合、サンプリ
ングした培養上清の未分化細胞数を 1 × 106 cells/mL とする。
・本方法では、未分化維持培養条件下の培養上清の測定値に基づく標準曲線を作成し、それを一つの基準にして測定対象となる試料中の未分化細胞数を算出する。
・細胞株又は培地の種類などの培養条件により、シグナル強度と細胞数（cells/mL）の関係が異なる場合がある。標準曲線は細胞株毎及び未分化維持培養条件毎に作成する。
＜キットの使用＞・使用前は 20℃～25℃に保管すること。
・プレート洗浄機などを使って洗浄を終えた後は、プレートを逆さにしてペーパータオルなどに軽く叩きつけてウェルに残っている余分な洗浄液を取り除く。
・プレートシール以外のキット構成試薬は、使用後速やかに冷蔵に戻して保管する。
＜試料（培養上清）の調製法＞
・測定対象試料及び標準曲線作成用試料は、培地交換後 18 時間～24 時間培養した上清をサンプリングする。
＊全培地交換を基本とし、その後の培養時間にも影響されるため、できるだけ培地交換
後サンプリングまでの時間を統一する。
・サンプリングした培養上清を 1,700 × g （3,000 rpm）
、10 min、室温で遠心すること。回
収される遠心上清を「試料」とする。
31

・すぐに測定に供しない場合は、-20℃以下で凍結保存する。
＜標準曲線作成＞
・細胞株毎及び未分化維持培養条件毎に標準曲線を作成する。
・全培地交換した 18 時間～24 時間後の培養上清をサンプリングした後、細胞を剥がして未分化細胞数を測定し、＜試料（培養上清）の調製法＞に従って培養上清から試料を調製する。測定に供するまで-20℃以下で凍結保存する（数回程度の凍結融解は可能）。
・測定対象となる試料と同じ新しい培地で希釈して標準曲線を作成する。最初は 30,000
cells/mL から 41 cells/mL まで 3 倍づつ段階希釈して傾向を確かめ、その後に適切な細胞数から 2 倍づつ段階希釈して検量線を作成すると良い。また、培地によってはバックグ
ラウンドが高いものもあるため、必ず培地のみのウェルも作成する。
・測定毎に Strip の一つを標準曲線用とし、そこで得られる標準曲線から測定対象となる試料の未分化細胞数を算出すると良い。
・検体数が多く、測定毎に Strip の一つを標準曲線用に使うことが難しい場合には、標準曲線に使用するウェル数を減らすこともできる（2~4 ウェル）
。ただし、直線関係が得られる細胞数を選ぶこと。
【操作】
＜準備＞
・使用する前に、rBC2LCN 固相化プレート、陰性コントロール、陽性コントロール、希釈液、洗浄液（10 ×）、発色停止液、プレートシールを室温にする（HRP 標識抗体溶液及び TMB 溶液以外の試薬）。
・洗浄液（10 ×）を室温の蒸留水で 10 倍希釈する。洗浄液（1 ×）は 1-Strip あたり少なく
とも 40 mL 必要となる（350 L/ウェル×洗浄 12 回 × 8 ウェル）。測定数（使用する Strip数）にあわせて調製する。ただし、プレート洗浄機を使う場合は、機械のセッティングに要する液量を考慮し多目に調製すること。
・反応の成否を確かめるための陽性コントロールは、使用直前に希釈液で 40 倍希釈する（希釈液 195 L に陽性コントロール 5 L を添加後ボルテックスで混合して、50 L/ウ
ェルで空いているウェルに添加する）。
・陰性コントロールは、希釈せずそのままウェルに添加する・HRP 標識抗体溶液は、使用直前に希釈液で 20 倍希釈して必要量（50 L/ウェル × ウェ
ル数）を調製すること。必要量を取り出した後の HRP 標識抗体溶液は速やかに冷蔵に戻すこと。
・TMB 溶液は、発色反応の 20 分前～30 分前に、必要量（50 L/ウェル × ウェル数）を滅菌された新しいチューブに分けて、使用するまで光を避けて室温で保管すること。必要量を取り出した後の TMB 溶液は速やかに冷蔵に戻すこと。
32

＜測定手順＞(1) rBC2LCN 固相化プレートが室温になったことを確認した後、袋からプレートを取り出し、測定に使用しない Strip をプレート枠から外して袋に戻し、チャックを閉じて冷蔵に保管する。
(2) プレート枠のホルダーを閉じて Strip を固定し、洗浄液（× 1）、350 L/ウェルで３回洗浄する。その後、プレートを逆さにしてペーパータオルなどに軽く叩きつけてウェルに残っている洗浄液を取り除く。
(3) 標準曲線用試料、測定対象試料、必要ならば陰性コントロール及び陽性コントロール
を、各々50 L/ウェル添加し、プレートミキサーなどで軽く撹拌した後、プレートシー
ルを貼って室温で１時間静置反応させる。
(4) プレートシールをはがし、洗浄液（× 1）、350 L/ウェルで３回洗浄する。その後、プ
レートを逆さにしてペーパータオルなどに軽く叩きつけてウェルに残っている洗浄液を取り除く。
(5) 20 倍希釈した HRP 標識抗体溶液を、50 L/ウェル添加しプレートミキサーなどで軽く撹拌した後、プレートシールを貼って室温で１時間静置反応させる。
(6) プレートシールを剥がし、洗浄液（1 ×）、350 L/ウェルで 6 回洗浄する。その後、プ
レートを逆さにしてペーパータオルなどに軽く叩きつけてウェルに残っている洗浄液を取り除く。
(7) TMB 溶液を、50 L/ウェル添加し、プレートミキサーなどで軽く撹拌した後、室温で30 分間静置反応させる（アルミホイルなどで上からカバーして光を避ける）(8) 発色停止液を、50 L/ウェル添加し、軽く撹拌して反応を停止させ、プレートリーダー
で吸光度［主波長 450 nm、副波長 620 nm～650 nm］を測定する。泡などが生じている
場合は、チップの先などで消してから測定する。
(9) 標準曲線に基づいて、測定対象となる試料中の未分化細胞数を算出する。
＊陽性コントロールを使用になった場合は、その吸光度が 0.5 以上であること、陰性コントロールを使用した場合はその吸光度が 0.15 未満であることを確認すること。
操作手順（フローチャート）
rBC2LCN 固相化プレート↓洗浄３回
標準曲線用試料、測定対象試料、場合により陰性及び陽性コントロールを 50 L/ウェ
ル添加
↓撹拌、室温、１時間反応（静置）↓洗浄３回
HRP 標識抗体溶液（20 倍希釈）を 50 L/ウェル添加33↓撹拌、室温、１時間反応（静置）↓洗浄６回
TMB 溶液を 50 L/ウェル添加↓撹拌、室温、30 分間反応（静置、遮光）
発色停止液を 50 L/ウェル添加↓撹拌
吸光度測定（主波長 450 nm、副波長 600～650 nm）

34

＜参考情報 5＞混在する未分化 ES/iPS 細胞の検出法としての Essential8/LN521 培養増幅法
出典：Tano et al. A novel in vitro method for detecting undifferentiated human pluripotent stem cells
as impurities in cell therapy products using a highly efficient culture system
PLoS ONE. 2014;9:e110496.
【方法】
1. ヒト iPS 細胞から間葉系幹細胞への分化途中で残存する未分化 iPS 細胞の検出
1.1 laminin-521（LN521）コーティングプレートの作製
PBS で 20 μg/mL に希釈した LN521 を培養用プレートに添加（1 mL / 10 cm2）し、37℃
で２時間以上インキュベートする。その後 LN521 を回収し、PBS で洗浄する。Essential 8培地で一度洗った後、Essential 8 培地を添加（2 mL / 10 cm2）し、細胞を播種するまで37℃でインキュベートする。
1.2 陽性対照細胞の調製
分化細胞としてヒト骨髄由来間葉系幹細胞（hMSC）を用意し、Essential 8 培地中に分散させる。この中に、分化誘導に使用した元の iPS 細胞株を、シングルセルの状態にしてEssential 8 培地中に分散させた後、スパイクする。
（例えば、iPS 細胞の混在率が 1、0.1、0.01%の場合、1 × 105 個の MSC 中に 1 × 103、 1 × 102、 1 × 10 個の割合で iPS 細胞をそれぞれスパイクさせる。また iPS 細胞の混在率が 0.001%の場合、6 × 105 個の hMSC 中に６個の割合で iPS 細胞をスパイクさせる。
）分化細胞とヒト iPS 細胞をよく混ぜた後、1.1 で準備した LN521 コーティングプレートに添加し、37℃ 5%CO2 で培養する。
（hMSC が 1 × 105 の場合は 35 mm ディシュ（又は 6 ウェルプレート）、6 × 105 の場合は 100 mm ディシュを使用。
）培養を始めてから２日後より毎日培地交換する。目視できるコロニーが形成されるまでの間は、アスピレートを使用せず、チップ又はピペットで培地を回収する。
1.3 テストサンプルの調製
ヒト iPS 細胞から分化誘導した細胞を Accutase で剥がし、Essential 8 培地中に分散させる。1.1 で準備した LN521 コーティングプレートに添加し、37℃ 5%CO2 で培養する。培
地交換の方法は 1.2 と同様。
1.4 残存未分化 iPS 細胞の検出
培養開始からおよそ 1 週間以内に残存 iPS 細胞が増殖し、コロニーを形成する。このコ
ロニーの有無を確認し、数を計測する。形成されたコロニーが未分化 iPS 細胞に由来することの確認として、TRA-1-60 などの未分化マーカーに対する抗体で免疫染色する。
残存の有無を判断するには、陽性対照で残存 iPS 細胞の検出感度を確認しておく必要が35

ある。また、本方法では、陽性対照で検出されるコロニー数と比較することで、おおよその残存率を見積もることができる。

36

＜参考情報 6＞混在する形質転換細胞の検出法としての in vivo 造腫瘍性試験
出典：Kusakawa et al. Characterization of in vivo tumorigenicity tests using severe immunodeficient
NOD/Shi-scid IL2Rγnull mice for detection of tumorigenic cellular impurities in human cellprocessed therapeutic products.
Regenerative Therapy. 2015;1:30-37.
【方法】
1. NOG マウスを用いた造腫瘍性試験
1.1 細胞培養
移植細胞として、形質転換細胞である HeLa 細胞を、正常細胞であるヒト骨髄由来間葉系幹細胞（hMSC）を用いる。培地は、HeLa 細胞の培養では 10%FBS 含有 Eagle’s minimum
essential medium（MEM）培地を用い、hMSC の培養では Mesenchymal Stem Cell Growth Medium（MSCGM）培地を用いる。
1.2 細胞移植と腫瘤形成の観察1.2.1 フラスコの面積の 80％を細胞が覆い尽くした状態に達した各細胞を 0.25%トリプシン-EDTA 溶液で剥がし、以下の濃度の細胞懸濁液を調製する。1) 1 ×106 個の hMSC に 10 個
（0.001%）、1 × 102 個（0.01%）、1 × 103 個（0.1%）、1 × 104 個（1%）個の HeLa 細胞を混入する。2) 1 × 107 個の hMSC に 10 個（0.0001%）、1 × 102 個（0.001%）、1 × 104 個（0.1%）個の HeLa 細胞を混入する。移植用の細胞懸濁液は、100 µL 中に上記の量の細胞を含むように、10%FBS 含有 MEM 培地とマトリゲルを 1:1 の割合で含む培地中に調製し、移植の直前まで氷上に置いておく。
1.2.2 6~8 週齢の雄性 NOG マウス（NOD/Shi-scid IL2RγKO Jic）の背部皮下に、25G 針付きの 1 mL シリンジを用いて 100 µL 移植する。１群あたり６匹以上を用いる。
1.2.3 毎週、視診及び触診によって腫瘤形成の有無を確認する（16 週間）。腫瘤の形成が確認されたら、ノギスを用い長径と短径の長さを計測する。腫瘤体積（mm3）は、長径（mm）
×短径 2（mm）2×1/2 の計算式で求める。腫瘤重量（比重を１として体積より計算）が体重の10%を超える大きさに達した場合又は 16 週を経過した場合、全ての動物を安楽死させ剖検
し、病理学的評価のために単離した腫瘤組織を 10%中性緩衝ホルマリン溶液に保存する。
1.2.4 各細胞濃度群について、腫瘤形成頻度（腫瘤形成が確認できた匹数／移植匹数）を求め、Spearman-Karber 法に基づいて、50%腫瘍形成細胞濃度（TPD50）を算出する。

37

1.3 正常細胞中の造腫瘍性細胞混在の有無の評価
陽性対照細胞の結果から、１匹のマウスにおける腫瘤形成が起こらない確率（偽陰性率）
x（＝1 - 腫瘤形成頻度）が得られる。n 匹のマウスに移植して全く腫瘤形成が観察されない
確率 y は、y = xn と表される。n = log y / log x という式が導かれ、許容できる偽陰性率に応じた試験に必要な動物数を算出することが可能である。例えば、10 個の HeLa 細胞を混入させた hMSC 1 × 107 個（HeLa 細胞混在率 0.0001%）を移植した時の腫瘤形成率が 17%という結果が得られていた場合、HeLa 細胞相当の造腫瘍性細胞が 1/106 の割合で混在する細胞を移植した１匹のマウスにおいて腫瘤が形成されない確率（偽陰性率）x は 0.83 とする。1%の確率で偽陰性の判定してしまうことを許容できるとすると、HeLa 細胞相当の造腫瘍性細
胞が 1/106 の割合で混在していないことを示すには、25 匹（= log 0.01 / log 0.83）の動物それぞれに 1 × 107 個を移植し、１匹も腫瘤形成がないことが確認できればよい。

38

＜参考情報 7＞混在する形質転換細胞の検出法としてのデジタル軟寒天コロニー形成試験
出典：Kusakawa et al. Ultra-sensitive detection of tumorigenic cellular impurities in human cellprocessed therapeutic products by digital analysis of soft agar colony formation.
Sci Rep. 2015;5:17892【方法】
1. 細胞培養及び試薬類
形質転換細胞として HeLa 細胞を、正常細胞としてヒト骨髄由来間葉系幹細胞（hMSC）を用いる。通常の HeLa 細胞の維持培養には 10% FBS 含有 MEM 培地を、hMSC の維持培養には Mesenchymal Stem Cell Growth Medium（MSCGM）培地を用いる。軟寒天培養用培地として、DMEM 粉末培地（フェノールレッドフリー）を用いて調製した 10% FBS 含有 1 ×
DMEM 培地及び 20% FBS 含有 2 × DMEM 培地、低融点アガロース SeaPlaque と滅菌水で調製した 1.2%アガロース溶液を使用する。生細胞染色用蛍光試薬として、MitoTracker Red
CMXRos 及び Hoechst 33342 を用いる。96 ウェルプレートは、底面の素材は、プラスチック
かつ細胞培養処理がなされていないものが望ましく、さらにウェル側面が黒のものが画像解析に適している。テラサキプレート、0.25%トリプシン-EDTA 溶液、4% PFA 溶液、PBS、
Buffer QG（寒天培地溶解用バッファー）、ハイコンテツイメージングシステムを使用する。
2. 試験方法
2.1 軟寒天コロニー形成試験
下図に示すような培地組成で細胞の３次元培養を行う。

培地層 100 µL（10% FBS 含有 1 × DMEM 培地）
細胞/軟寒天層 75 µL（10% FBS 含有 1 × DMEM 培地、0.4%アガロース
含）底部寒天培地層 50 µL（10% FBS 含有 1 × DMEM 培地、0.6%アガロース
含）図．軟寒天培養（96 ウェルプレート 1 ウェルの断面図）
準備として、10% FBS 含有 1 × DMEM 培地と 20% FBS 含有 2×DMEM 培地をそれぞれ37℃に温めておく。1.2%アガロース溶液は電子レンジで溶解し、37℃に保っておく。
底部寒天培地層の調製：20% FBS 含有 2 × DMEM 培地と 1.2%アガロース溶液を 1:1 の割合で混ぜ、96 ウェルプレートの各ウェルに 50 µl ずつ分注し、プレートを冷蔵庫（４℃）に移して 30 分間固化させる。
39

細胞/軟寒天層の調製：細胞は、0.25%トリプシン-EDTA 溶液で剥がし、10% FBS 含有 1 ×
DMEM 培地を用いて様々な濃度に調製しておく（例えば、1 ウェル辺り 1 x 104 個の細胞を播種する場合、4 × 105 個/mL の濃度で懸濁液を調製しておく→1 x 104 個/25 µL）。10% FBS
含有 1 × DMEM 培地で調製した細胞懸濁液、20%FBS 含有 2 × DMEM 培地、1.2%アガロー
ス溶液を 1:1:1 の割合で混ぜ、96 ウェルプレートの固化した底部寒天培地層上に 75 µL ず
つ分注し、プレートを冷蔵庫（４℃）に移す（15 分間）。
培地層：10% FBS 含有 1 × DMEM 培地 100 µL を細胞/軟寒天層上に添加する。培地交換
は 3~4 日に一度の頻度で行い、37℃、5% CO2 濃度環境のインキュベーターで 30 日間培養する。
2.2 ハイコンテンツイメージングシステムを用いたコロニーの画像解析
染色：30 日間の培養後、各ウェルから培地 100 µL をピペットで取り除き、生細胞染色
試薬を含む 10% FBS 含有 1 × DMEM 培地（6 µg/mL Hoechst 33342、150 nM MitoTracker
Red CMXRos）を 25 µL ずつ添加し（Hoechst 33342 の最終濃度、1µg/mL；MitoTracker
Red CMXRos の最終濃度、25 nM）、37℃、5% CO2 濃度環境のインキュベーターで１時間培養する。固定：生細胞染色試薬を含む 10% FBS 含有 1 × DMEM 培地をピペットで取り除き（PBS を 100 µL 添加した後、一緒に取り除く）、4% PFA 溶液を 125 µL 各ウェルに添加し（PFA 最終濃度は２%）、室温で 30 分間静置する。溶解及び沈降処理：PFA を除き、PBS による洗浄（100 µL 添加、10 分静置、PBS の除去）を２回行った後、50 µL の Buffer QG を各
ウェルに添加し、37℃で１時間培養する。以上の処理によって、形成されたコロニーの核とミトコンドリアがそれぞれ青、赤に染色され、さらにコロニーはウェル底部に沈降する。
画像解析を行うときまで、プレートは遮光し冷蔵庫で保管しておく（培地の蒸発を防ぐた
め、PBS を各ウェルに添加しておく）。
2.3 画像の取得
４倍の対物レンズを使用し、96 ウェルプレート１ウェル辺り、４視野の画像を各ウェルで取得する。３つのチャンネル（青、赤、明視野）で、それぞれで取得する。
2.4 画像解析
１ウェル辺り4視野の画像のつなぎ合わせ処理を行い、１ウェル全体の画像を生成しておく。あらかじめ設定した解析スクリプトを用い（評価指標：大きさ、真円度、蛍光強度）、青及び赤のそれぞれの蛍光画像から認識された領域を抽出し、それらが重なり合った場合、コロニー有りと判定する。またデブリ等の非特異的な染色ではないことなどを確認するため、明視野像でコロニーを目視する。

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2.5 陽性対照細胞における検出感度の確認（107個のhMSC中に混在する１個のHeLa細胞の検出の場合）HeLa細胞の調製：HeLa単一細胞は、50~100個/mlのHeLa細胞懸濁液を調製し、10 µLずつ
テラサキプレートの各ウェルに分注する。顕微鏡下でHeLa細胞単一細胞が存在するウェルを確認しておく。hMSCの調製：hMSC 107個からなる細胞懸濁液を調製し、リザーバー内
で1.2%アガロース溶液、20%FBS含有2×DMEM培地と混ぜ合わせる（例：2.5 x 106個/mLのhMSC懸濁液4.4 mL＋1.2%アガロース溶液4.4 mL＋20% FBS 含有2 × DMEM培地4.4 mL）。
さらに、テラサキプレート上よりピペットで単離したHeLa単一細胞を混入させ、マルチチャンネルピペットを用い、160ウェル（２枚の96ウェルプレートに80ウェルずつ）に分注する。75 µLの細胞/軟寒天層中に62,500個のMSCと0.00625個のHeLa細胞が含まれ、すなわ
ち160ウェル中１ウェルに１個のHeLa細胞が含まれることになる。
前述の方法に沿って、軟寒天培養及び画像解析を行う。また、HeLa細胞が未混入である
hMSCのみでの培養も併せて行うことにより、陰性対照としてコロニーが全く検出されないことを確認する。
3. 正常細胞中の悪性形質転換細胞混在の有無の評価
陽性対照細胞の結果に基づいて、陽性対照細胞相当の悪性形質転換細胞の混在の有無の評価を行う。HeLa 細胞を陽性対照細胞とする場合、HeLa 細胞相当の細胞の混在の有無を判定することになる。陽性対照細胞の結果から、試料を分画した１ウェルにおいてコロニーが未検出となる確率（＝コロニーがないウェル数／分画数（コロニーがないウェル数の確率分
布））が得られる。１回の試行（複数ウェルへの試料の分画）の全てにおいてコロニーが未検出となる確率 x（=試料を分画した１ウェルにおいてコロニーが未検出となる確率^分画ウェル数）が得られる。n 回の試行全てにおいてコロニーが未検出となる確率（偽陰性率）yは、y = xn と表され、n = log y / log x という式が導かれる。この式を用いて、許容できる偽陰性率に応じた試行回数を算出することが可能である。すなわち、試験細胞試料における悪性形質転換細胞の混在の否定に必要な試行回数を陽性対照細胞の結果から見積もることが可能となる。以下に例を示す。
107 個の hMSC に１個の HeLa 細胞を混入させた細胞試料を陽性対照とし、以下の表に示すような結果が得られているとする。
107 個の hMSC に１個の HeLa 細胞を混入させた細胞試料を 160 ウェルに分画し、軟寒天コロニー形成試験を行った（試行回数 6 回）

１ウェル
内のコロ
ニー数

ウェル数
試行１

試行２

試行３

試行４

試行５

試行６

平均

の確率分
布

0

159

160

159

159

160

159

159.3

0.9956

1

1

0

1

1

0

1

0.7

0.004441

1 ウェルにおいてコロニーが未検出となる確率、すなわちコロニーがないウェル数の確率分布（コロニーがないウェル数／分画数＝159.3／160）は、0.9956 である。１回の試行（複数ウェルへの試料の分画＝160）の全てにおいてコロニーが未検出となる確率 x、すなわち試料を分画した１ウェルにおいてコロニーが未検出となる確率分画ウェル数は、0.9956160 =0.4938 と な る 。 例 え ば 、 1% の 確 率 で 偽 陰 性 が あ る こ と を 許 容 す る 場 合 、 n =log(0.01)/log(0.4938) = 6.526 という値が得られる。すなわち、ある細胞試料中に HeLa 細胞相
当の悪性形質転換細胞が 1/107 の割合で混在していないことを示すには、陽性対照細胞と同様の操作を７回試行し、コロニーが未検出であることが確認できればよいと考えられる。

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＜参考情報 8＞混在する形質転換細胞の検出法としての細胞増殖特性解析
出典1：Kono K, Takada N et al. Characterization of the cell growth analysis for detection of immortal
cellular impurities in human mesenchymal stem cells. Biologicals. 2015:43:146-9. (See also: Kono K,
Takada N et al. Corrigendum to "Characterization of the cell growth analysis for detection of immortal
cellular impurities in human mesenchymal stem cells" [Biologicals 43 (2) (March 2015) 146-149].
Biologicals. 2017;45:106.)
出典2：Hasebe-Takada N, Kono K et al. Application of cell growth analysis to the quality
assessment of human cell-processed therapeutic products as a testing method for immortalized
cellular impurities. Regen Ther. 2016;5:49-54. (A corrigendum is in press.)
【方法】
1. 細胞
ヒト骨髄由来間葉系幹細胞（hMSC）は、５継代目までは Mesenchymal Stem Cell Growth
Medium（MSCGM）で培養する。ヒト脂肪由来幹細胞（ADSC）は、５継代目までは ADSCBulletKit で培養する。HeLa 細胞は、Eagle’s minimum essential medium に 10% ウシ胎児血清（FBS）、0.1 mM 非必須アミノ酸溶液、50 U/mL ペニシリン、50 mg/mL ストレプトマイシンを加えた培地で培養する。hTERT で不死化した脂肪由来間葉系幹細胞（ASC52telo）は、
ADSC-BulletKit で培養する。
2. 細胞増殖特性解析
５継代目の 1 × 106 個の hMSC に、それぞれ 1 x 103 個（0.1%)、1 x 102 個（0.01%）、10 個（0.001%）、１個（0.0001%）の HeLa 細胞を混入させ、T175 フラスコに播種する、又は、5継代目の 1 × 106 個の ADSC に、それぞれ 1 x 103 個（0.1%）、1 x 102 個（0.01%）、10 個（0.001%）の HeLa 細胞を混入させ、T175 フラスコに播種する。細胞は、Dulbecco’s Modified Eagle’s
Medium （DMEM） に 10% FBS、50 U/mL ペニシリン、50 mg/mL ストレプトマイシンを加えた培地 40 mL で培養し、2~3 日毎に培地交換する。およそ 90%コンフルエントに達した細胞は、リン酸緩衝生理食塩水（PBS）で洗い、0.05% トリプシン-EDTA 溶液でフラスコから剥離する。剥離した細胞は、450 × g、5 分間遠心分離し、培地上清を除いた後、新鮮培
地で細胞を懸濁する。懸濁した細胞の一部を、トリパンブルー溶液で染色し、自動セルカウンターで細胞数を計測する。1 × 106 個の細胞を T175 フラスコに播種し、次の継代まで培養する。この一連の操作を 10 継代目（HeLa 細胞をスパイクした hMSC）又は 20 継代目（ASC52telo 細胞をスパイクした ADSC）まで繰り返す。細胞増殖速度は下記の式を用いて算出する。
Rn = [log2(Nn+1 / Nn)]/(Dn+1 - Dn)
Nk ; k 継代時の細胞数、 Dk ; k 継代時の日数43不死化細胞混在の判定は、細胞増殖速度を５継代目と比較し、有意な差の有無で判断する、又は、陰性対照の経時的な細胞増殖速度と比較して判断する。

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