光合成研究
第24巻第3号（通巻71号）2014年12月

NEWS LETTER Vol. 24 NO. 3 December 2014
THE JAPANESE SOCIETY OF PHOTOSYNTHESIS RESEARCH

研究紹介

葉緑体ATP合成酵素の機能的多様性
上妻馨梨（広島大）!

!

解説特集「浅田浩二先生を偲んで」 活性酸素とalternative electron flow研究の現状!
序文! !
解説

! 76

!

! 81

遠藤 剛（京都大）!

! 82

活性酸素は生体分子にどう作用するか？— 酸化シグナルを伝える活性カルボニル種の生成と作用
真野 純一（総合科学実験センター）!

!

解説 Water-water cycleと光化学系I循環的電子伝達! 84〜浅田浩二先生を偲んで
遠藤 剛（京都大）!

!

! 90

解説 これまで欠けていた、速度論的評価に基づく、オルタナティブ・エレクトロン・フロー活性の比較と光合成におけるO2の役割!
報告記事

若手の会活動報告高木 大輔

三宅 親弘（神戸大）!

! 97〜サイエンスアゴラ2014への出展〜
浅井 智広（立命館大）!

!
報告記事

サイエンスアゴラ2014 “一緒に考えよう！「光合成でつくる未来」” 出展報告!

!

事務局からのお知らせ!
日本光合成学会会員入会申込書!

! 111

辻 敬典（筑波大）!

! 112

!

! 115
! 117

日本光合成学会会則!

!

!

! 118

幹事会名簿!

!

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! 120

編集後記!

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! 121

記事募集!

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! 121

賛助法人会員広告光合成研究24 (3) 2014

研究紹介

葉緑体ATP合成酵素の機能的多様性§
広島大学・大学院理学研究科・附属植物遺伝子保管実験施設
上妻馨梨*葉緑体ATP合成酵素複合体は、その複合体の中心に位置するγサブユニットのジスルフィド結合によって活性制御されており、光環境下ではジスルフィド結合の還元切断によって活性化されている。シロイヌナズナのγサブユ
ニット遺伝子は2つのATPC1とATPC2にコードされているが、光合成の場である葉においてATPC2の発現はほとんど検出されないことから、その機能は全く不明であった。本研究において、ATPC2は地下部で発現しており、
ATPC1とは異なる機能を持つことが明らかになった。この結果は、葉緑体ATP合成酵素が光合成によるATPの合成だけでなく、器官別に異なる機能を持つことを示唆している。

1. はじめにのATP合成酵素（CFoCF1）には、細菌やミトコンドリ

ATP 合成酵素は原核生物の細胞膜、真核生物のミトア由来の酵素と大きく異なり、酵素活性はチオレドキ

コンドリア内膜、光合成生物の葉緑体チラコイド膜にシンを介して光制御されている。葉緑体型ATP合成酵

存在し、電子伝達に伴って形成される膜を介したプロ

素の回転軸であるγサブユニットには、中央付近にジトンの電気化学的勾配を用いてATPを合成する。ATPス ルフィ ド 結 合 を 形 成 す る 2 つ の シス テイ ン 残 基合成酵素は生物種や細胞内小器官の由来に関わらず、（Cys）があり、その酸化還元によって酵素活性が制酵素を構成するサブユニットが回転することでATPの御されている2)。この2つのシステインを含む制御領域

合成／加水分解を行うというユニークな共通の動作原は葉緑体型のγサブユニットのみに特徴的なもので、理で働いている。ATP合成酵素の基本構造は、膜内在制御領域を持たない細菌のγサブユニットにこの制御のF o 部分と膜表在で球状のF 1 部分の2つの複合体で構領域を遺伝子的に挿入すると、酵素活性が光制御され成され、それぞれのサブユニット構造と機能は、生物

る3,4)。

種を通じてほぼ保存されている 1 ) 。しかし、葉緑体型

シロイヌナズナの葉緑体ATP合成酵素-γサブユニッ
トは、2種類の遺伝子ATPC1とATPC2（At4G04640,
At1G15700）によってコードされており、アミノ酸配列は73％と高い相同性を持つことが20年前にすでに報告されていた5)。しかし、ATPC2の発現量が極わずかであることから 6) 、その欠損変異体の光合成活性は野生型と違わず、ATPC2の機能や生理的役割などの研究はこれまでほとんど行われていなかった。
本研究ではγ2-ATP合成酵素（ATPC2由来）の機能を明らかにするために、ATPC1欠損変異体にATPC2を過剰発現させたγ2-ATP合成酵素優性植物体（gamera）を

図1 光制御される葉緑体ATP合成酵素の模式図
光環境下ではチオレドキシン（Trx）を経由してγサブユニットが還元型になり活性化する。暗黒下ではシステインがジス
ルフィド結合を形成し、不活性型になる。
§ 第5回日本光合成学会シンポジウム

作製し、解析することで、その新規な機能を明らかにしたので、その概要について紹介する。

ポスター発表賞受賞論文* 連絡先 E-mail: kohzuma@hiroshima-u.ac.jp76光合成研究24 (3) 2014

は2つのCysがジスルフィド結合しているものの何らか

2. γ2-ATP合成酵素の特性
ATPC2の機能解析を行うためにシロイヌナズナにおの理由でプロトンが漏洩しやすくなっていることの2通

いてγ2 - AT P合成酵素優性な形質転換体を作製した。

りが予想された。そこで、暗所におけるγ2サブユニッ

ATPC1にT-DNAが挿入されているdpa1変異体をバック

トのジスルフィド結合の有無を検証した（図2B）。検グラウンドとし、CaMV35SプロモーターでATPC2を証には還元型のシステインを特異的に修飾する 4 -過剰発現させることで、全ATP合成酵素の約95％をγ2

acetamido-4ʹ′-maleimidylstilbene-2,2ʹ′-disulfonate (AMS) を型が占めるγ2-ATP合成酵素優性植物体（gamera）を用いた。A M Sと結合した還元型γサブユニットは酸化作製した。なお、野生型では葉における全ATP合成酵型γサブユニットに比べて電気泳動時の移動度が小さく

素の90％以上がγ 1-ATP 合成酵素である。

なる。γサブユニットのバンドは特異的抗体によって検γ2-ATP合成酵素の特性を明らかにするために、チラ出した。野生型において、暗黒下ではγサブユニットは

コイド膜におけるカロテノイド吸収のElectrochromic

酸化型であり、光照射下γサブユニットは還元型であっShift (ECS)を用いてin vivoで酵素の構造変化を見積もった。一方、gameraのγ2サブユニットでは暗黒条件下にた。このECS解析法は、葉緑体のチラコイド膜内外においても還元型と同じ移動度であることが観察され形成されるプロトンの電気化学的勾配（pmf）を間接的た。この事は、γ2サブユニットの制御領域に存在する2に測定する手法である。電子伝達系によって形成されつのCysが、暗黒処理下においてもジスルフィド結合をたpmfは、主にATP合成酵素がATP合成を行う過程で解形成できないことを示唆する6)。これらの結果から、γ消していくため、pmfの挙動からATP 合成酵素活性を測

2-ATP合成酵素は光に非感受性であり、その構造は還定することが可能である7,8)。葉緑体ATP合成酵素（こ元型を保持することが明らかになった。

の場合γ1-ATP合成酵素を指す）の活性は光制御されており、光照射によって還元型（活性型）になった酵素はより多くのプロトンをチラコイドルーメンからストロマへ輸送する。しかし、消光後は徐々に酸化型（不活性型）へ構造を変化するためプロトンの流出は低下する。そのため、数分の光照射によって誘導された還元型ATP合成酵素、あるいは暗黒下で完全に酸化されたAT P合成酵素を持つ植物葉にパルス光を照射するとチラコイド膜にpmfが形成され、その後、ATP合成酵素
によるAT P合成に伴ってp m fは解消される。還元型のAT P合成酵素を持つチラコイド膜のp m f解消速度は速
く、酸化型では解消速度が遅くなる。野生型とgameraの成熟葉を用いて、光照射直後と光照射後60分間暗所に置いた場合でチラコイド膜のpmf解消の挙動を調査した（図2A）。光照射直後の野生型では速いpmfの解消が見られ、暗処理後はその解消速度は半分以下に遅くなった。一方、gameraでは60分間以上暗黒下に置いても光照射直後と同様、速いpmfの解消速度を保持していることが観察された。この結果は、γ2-ATP合成酵素が
図2 γ2-ATP合成酵素の酸化還元状態(A) ECS解析法を用いたpmf解消速度の測定。赤ラインは光
照射直後1分間、黒ラインは光照射後60分間暗処理し、非飽和パルスを照射したの後のpmf解消の挙動。gameraは暗処理後も速いpmf解消速度を保持した。 (B) AMSラベリング法によるγサブユニットの酸化還元型の検出。gameraのγ2サブユ
ニットは暗黒処理をしても還元型を保持した。(Kohzuma etal., 2012を改変)

γ1-ATP合成酵素と異なり、光の有無によらず常に活性化状態を保持していることを示唆していた6)。
ATPC2はATPC1と同様にγサブユニットの制御領域に2つのCysを持つ。gameraのチラコイド膜が暗所で高い
pmfの解消能を持つ原因としては、γ2サブユニットの2つのCysがジスルフィド結合を形成しないこと、あるい77

光合成研究3. γ2-ATP合成酵素の局在と側根形成への影響

24 (3) 2014

gameraではほとんど低下しなかった（図4A）。この

γ2 - AT P合成酵素が暗黒下でも還元型を保持するこ

結果からgameraの電子伝達系が4日間の暗黒処理後にとから、光が照射されない環境下において重要な役割も安定であることが予測されたため、PSIIタンパク質を持つ酵素であることが推測された。実際、ATPCプの蓄積量を観察した（図4B）。PSIIのルーメン側に局

ロモーターの局在解析を行った結果、ATPC1は植物全在する酸素発生複合体（OEC）を構成するOEC17、23体に発現しているのに対し、ATPC2は葉などの地上部は野生型においてその蓄積量が大きく低下したのに対組織では発現せず、地下部組織、特に根と胚軸の境目

し、g a m e r aでは非常に安定であった。一方、膜貫通に 強 く 発 現 して い る こ と が 明 ら か に な っ た （ 図タンパク質であり反応中心を構成する D 1 タンパク質3A）。次に、根の形態を観察したところ、gameraでは4日間の暗処理において、両者ともその蓄積量に変は側根が野生型と比較して約 2 倍長いこと、また化は見られなかった。これらの現象から、ATP合成酵

ATPC2の欠損変異体（atpc2）では野生型の1/3程度の素が暗黒下で活性型であることがPSIIのタンパク質と長さであることが観察された6)（図3B）。これらの結その機能の安定性を高めていることが推測された。暗果から、γ2 - AT P合成酵素は根に近い光の微弱な環境

黒下において、野生型のγサブユニット（主にγ1）は下で発現しており、還元型（活性型）を保持すること

酸化型になり酵素が不活性になるが、γ2 - AT P合成酵

によって側根形成など光合成におけるATP合成とは異素のように暗黒下において活性型を維持することは、なる役割を持つことが示唆された。

γ 2 - A T P 合成酵素が実際は A T P 加水分解酵素（ H + ATPase）として機能している可能性を示唆する。ATP
分解の過程でストロマのプロトンはルーメンへ流入するため、チラコイド膜を介したプロトン勾配つまり
pmfの形成が推測される。そこで、γ2-ATP合成酵素優性であるgameraが暗黒下でpmfを形成する能力を保持するかどうか検証した。チラコイド膜タンパク質が膜に移項、挿入される経路には幾つかメカニズムが存在するが、OEC17、23といったタンパク質はチラコイド
膜を介して形成されるプロトン勾配、すなわちp m fを利用して挿入されるTwin arginine transporter (Tat) 依存型挿入経路を経由することが知られている10)。この機

図3 ATPC2の局在とATPC2発現量が側根形成に及ぼす影響(A) プロモーターGUSを用いた ATPC1, 2の局在解析。C1は植物全体に、C 2は地下部、特に根と胚軸の境目に強く局在することが明らかになった。 (B) 野生型、gamera、atpc2の根の形態。 A T P C 2 の発現量が多いほど側根伸張が観察された。スケールバーは1 mm。

構を利用し、野生型およびg a m e r aの単離チラコイド膜を用いて、OEC23がチラコイド膜へ挿入される様子
をinvitroで観察した（図4C）。その結果、暗黒下における野生型由来のチラコイド膜ではATP存在下、および還元剤であるDTT非存在下では、OEC23の挿入が起こらなかったのに対し、g a m e r aのチラコイド膜で4. 根におけるγ2-ATP合成酵素の役割

は挿入が起こった。Tat依存経路を要求するOEC23が地上部と地下部との境目の未熟なプラスチドにおい膜へ挿入されたということは、γ2 - AT P合成酵素をもてγ2 - AT P合成酵素はどのような働きを持つのだろう

つチラコイド膜にp m fが形成されていることを示唆しか？その疑問に少しでも近づくため、gameraを最大4ており、ATP分解によるプロトンのルーメンへの流入

日間暗黒条件に曝し、その光合成明反応の挙動を調べを意味している（図4 D）。これらの結果から、チラた。通常、暗所に置かれた植物は光合成関連タンパク

コイド膜を介して形成されたpmfがTat経路を含む何ら質の分解が積極的に誘導され、それと共に電子伝達活

かの機構によってタンパク質を安定に導き光合成活性性も低下していく 9) 。4日間の暗黒処理でγ1-ATP合成を維持することが明らかになった（未発表）。

酵素優性である野生型の P S I I の最大量子収率（ F v /しかしながら、これらの現象は光合成器官である葉F M ）は50%低下したが、γ2-ATP合成酵素優性である

で観察されたものである。実際、未熟なプラスチドに78

光合成研究24 (3) 2014

図4 暗黒処理した野生型とgamera(A) 最大4日間暗黒処理した際のFv/FM。黒四角が野生型。白三角がgamera。(B) PSIIタン
パク質の蓄積量の変化。野生型のO E C 1 7、23の蓄積量低下が観察された。(C) OEC23を基質に用いたチラコイド膜への挿入実験。
gameraにおいてOEC23の膜への挿入が観察された。(D) in vitro挿入実験における野生型とgameraのATP合成酵素特性とそれがTatタ
ンパク質挿入に及ぼす影響をまとめた模式図。

謝辞

光化学系は存在しないとされている。ただ、エチオプ
ラストにおいてATP合成酵素（CFoCF1の両方）の存在

本稿で紹介した研究はミシガン州立大学のDavid Mが確認されていることから11)、ATPC2が存在するよう

Kramer博士の研究室在籍時に、ミュンヘン大学のJörg

な組織のプラスチドにおいてATP合成酵素が複合体とMeurer博士との共同研究のもと行われた。この場を借して存在し、何らかの働きを持っていてもおかしくな

りて、二人の博士とこの研究に協力して下さった多くい。未熟なプラスチドのチラコイド膜においてもタンの方へ感謝申し上げたい。また、このような執筆の場

パク質の合成と挿入は行われているはずである。そのを与えて下った日本光合成学会および編集委員の皆エネルギーの担い手としてγ2-ATP合成酵素がpmfの形

様、執筆にあたりアドバイス下さった広島大学の島田成に寄与しており、そのエネルギーが地下部における裕士博士にお礼申し上げる。

形態形成などに関与しているのかもしれない。

5. 今後の展望

Received November 2, 2014, Accepted November 15, 2014,

夜間、ATP合成酵素が不活性化する理由はATP分解

Published December 31, 2014を抑制するためであると考えられてきた。今回、γ2 ATP合成酵素が暗所で高い活性を持つことと、それに参考文献

伴うpmf形成の実態が明らかになった。その過程にお1. Capaldi, R.A. and Aggeler, R. (2002) Mechanism of theF1Fo-type ATP synthase, a biological rotary motor.
Trends Biochem. Sci. 27, 154-160.
2. Groth, G. and Strotmann, H. (1999) New results about
structure, function and regulation of the chloroplast
ATP synthase (CFoCF1). Physiol. Plant. 106, 142-148.
3. Bald, D., Noji, H., Stumpp, M.T., Yoshida, M. andHisabori, T. (2000) ATPase activity of a highly stable
α3β3γ subcomplex of thermophilic F1 can be regulatedby the introduced regulatory region of gamma subunitof chloroplast F1. J. Biol. Chem. 275, 12757-12762.
4. Kim, Y., Konno, H.. Sugano, Y. and Hisabori, T. (2011)
Redox regulation of rotation of the cyanobacterial F1ATPase containing thiol regulation switch. J. Biol.
Chem. 286, 9071-9078.

いて、γ2-ATP合成酵素を優性に持つ植物体とγ1-ATP合成酵素を持つ野生型とを比較しても、通常生育下および長期暗黒条件下、いずれにおいても特に不利な点が見当たらない。つまり、ATP合成酵素が光制御されなければならない理由が明確に説明できないのである。ATP合成酵素はチラコイド膜における唯一のプロ
トンチャネルであり、プロトン濃度を調節している重要なタンパク質複合体である。今後は、ATP合成酵素
が光制御されている理由をプロトン濃度調節という視点から観察し、その機能的多様性の全貌を明らかにしていきたい。

79

光合成研究5. Inohara, N., Iwamoto, A., Moriyama, Y., Shimomura,S., Maeda, M. and Futai, M. (1991) Two genes, atpC1
and atpC2, for the gamma subunit of Arabidopsis
thaliana chloroplast ATP synthase. J. Biol. Chem. 266,
7333-7338.
6. Kohzuma, K., Dal Bosco, C., Kanazawa, A., Dhingra,
A., Nitschke, W., Meurer, J. and Kramer, D. M. (2012)
Thioredoxin-insensitive plastid ATP synthase that
performs moonlighting functions. Proc. Natl. Acad. Sci.
USA 109, 3293-3298.
7. Kanazawa, A. and Kramer, D.M. (2002) In vivo
modulation of nonphotochemical exciton quenching(NPQ) by regulation of the chloroplast ATP synthase.
Proc. Natl. Acad. Sci. USA 99, 12789-12794.
8. Kohzuma, K., Cruz, J.A., Akashi, K., Hoshiyasu, S.,

24 (3) 2014

Munekage, Y.N., Yokota, A. and Kramer, D. M. (2009)
The long-term responses of the photosynthetic proton
circuit to drought. Plant Cell Environ. 32, 209-219.
9. Keech, O., Pesquet, E., Ahad, A., Askne, A., Nordvall,D., Vodnala, S.M., Tuominen, H., Hurry, V.,
Dizengremel, P. and Gardestrom, P. (2007) The
different fates of mitochondria and chloroplasts duringdark-induced senescence in Arabidopsis leaves. Plant
Cell Environ. 30, 1523-1534.
10. Braun, N.A. and Theg, S.M. (2008) The chloroplast Tat
pathway transports substrates in the dark. J. Biol.
Chem. 283, 8822-8828.
11. Ploscher, M., Reisinger, V. and Eichacker, L.A. (2011)
Proteomic comparison of etioplast and chloroplast
protein complexes. J. Proteomics 74, 1256-1265.

Characterization of the Novel Chloroplast ATP synthase

Kaori Kohzuma*

Lab of Plant Chromosome and Gene Stock, Hiroshima University80

光合成研究24 (3) 2014

解説特集
「浅田浩二先生を偲んで」
活性酸素とalternative electron flow研究の現状

Editor: 遠藤 剛（京都大学 生命科学研究科）

序文
遠藤 剛（京都大学 生命科学研究科）
P. 82
活性酸素は生体分子にどう作用するか？
— 酸化シグナルを伝える活性カルボニル種の生成と作用
真野 純一（山口大学 大学研究推進機構 総合科学実験センター）
P. 84 〜 89
Water-water cycleと光化学系I循環的電子伝達〜 浅田浩二先生を偲んで

遠藤 剛（京都大学 生命科学研究科）
P. 90 〜 96
これまで欠けていた、速度論的評価に基づく、オルタナティブ・エレクトロン・フロー活性の比較と光合成におけるO2の役割 〜生理的な意味が見える、本丸へ挑む〜
高木 大輔

三宅 親弘（神戸大学）
P. 97 〜 11081

光合成研究24 (3) 2014

解説
序文‡
京都大学 生命科学研究科
遠藤 剛*

今回の特集では，昨年（2013年）暮れに亡くなられた浅田浩二先生（京都大学名誉教授）の御業績を偲び，私たち門下生たちが先生の偉大な足跡をたどりながら、先生の教えをもとに発展させてきた研究を紹介しようと思います．
浅田先生のライフワークはご存知のように葉緑体での活性酸素の生成と消去のメカニズムの解明である。先生のご研究により、以下のような葉緑体での活性酸素生成と消去の分子機構が明らかにされた。葉緑体での活性酸素の生成機構はいくつか報告されているが、光化学系Iで不可避的に起こる酸素分子の1電子還元（Mehler反応）に起因するものは、最も重要なもののひとつと考えられている。この反応でできる活性酸素はスーパーオキシドラジカルであり、これから派生する過酸化水素やヒドロキ
シラジカルは、細胞の多くの成分に傷害をあたえる。浅田先生は、スーパーオキシドラジカルが過酸
化水素を経て安定かつ無毒な水にまで還元（消去）される過程でスーパーオキシドジスムターゼ、アスコルビン酸ペルオキシダーゼ、モノデ
ヒドロアスコルビン酸還元酵素、デヒド
ロアスコルビン酸還元酵素等がネット
ワークをつくって機能することを明らかにされた。その際、活性酸素の消去に使われる還元力は実は光化学系 I で生成する余剰な還元力であるという精妙な分子機構の解明も先生のご研究の重要な成果のひとつと評価されている。先生は、光化学系I Iで酸化分解される水が、光化学系 I で生成した活性酸素の還元消去の安全な最終産物として生じるという自ら見出した電子伝達経路をWater-water

cycle(WWC) と命名し、国際的に認められる用語となっている（図1）。
浅田先生は、研究生活のはじめに、イ
ネやトウモロコシ等の作物が最適な環境で栽培されても、太陽光エネルギー固定‡

図1 Water-water cycleの概念モデル（浅田先生ご自身による作図を一部修正）
APX: アスコルビン酸ペルオキシダーゼ； DHAR:デヒドロアスコルビ
ン酸レダクターゼ； Fd:フェレドキシン；FNR:フェレドキシンNADP+レダクターゼ； GR:グルタチオンレダクターゼ； MDAR:モノデヒ
ドロアスコルビン酸レダクターゼ
SOD: スーパーオキシドジスムターゼ

解説特集「 浅田浩二先生を偲んで」* 連絡先 E-mail: tuendo@kais.kyoto-u.ac.jp82

光合成研究24 (3) 2014

効率は最高で3〜4％にすぎないことに注目し、どのような環境条件の組み合わせが、どのような分子機構で光合成効率を低下させているのか？という疑問の解明を志した。またこの研究の過程で、植物以外の生物が太陽光によって障害を受けるにもかかわらず常に太陽光にさらされている光合成生物がどうして「日焼け」しないのかという疑問を持ち、これがライフワークとなった葉緑体での活性酸素の生成と消去のメカニズムの解明の研究に発展した。SODの精製と酵素学的解析から始められた活性酸素研究の大きなブレークスルーは、活性酸素の還元にアスコルビン酸が利用されることと、この反応で酸化状態となった酸化型アスコルビン酸が、再生（還元）されるときに、光化学系I由来の還元力が利用されることの発見である。この発見を報告した1981年の論文は、Plant and Cell Physiology誌に発表された論文の中でも最も引用回数の多い論文のひとつである。この論文中に発表されたWWCの初期のモデルは、その後の研究により、図1のような複雑な代謝ネットワークとして完成したわけだ
が、興味のあるかたは、Nakano and Asada (1981)の原著掲載モデルと最終モデルを比較していただきたい。
WWCの解析により植物のストレス応答における活性酸素の役割は明確になったが、今日では活性酸素の役割は、傷害因子としての理解から酸化シグナル因子としての理解へと重要度が増している。
先生の業績はW W Cの解明にととまらず、光合成と光阻害、地球の酸素濃度の変遷と生物進化、光合成と酸素、光合成の環境応答について顕著な業績を挙げられているが、本特集では、浅田先生のご指導の下で始めた様々な研究を基盤として門下生たちが独自に発展させていった活性酸素研究、ストレス応答研究、光合成循環電子伝達研究の現状と展望を概観する。山口大の真野さんには、葉緑体で生成する活性酸素から派生する過酸化脂質由来「活性カルボニル種」の生理作用についての研究を始められた経緯とこれまでの研究成果をご紹介いただき、これらが、細胞に傷害を与えるというマイナスの作用のみならず、酸化シグナルとして機能している可能性を解説していただく。遠藤は、浅田先生の指導の下で始めた、Alternative electron flow（AEF, 付加的電子伝達）の一経路である光化学系I周辺の循環的電子伝達の生理的機能について、WWCと比較しながら考察する。最後に神戸大の三宅さんには、様々なAEF経路を紹介いただき、現在大きな課題となっているそれぞれの経路の定量的解析についての現状をまとめていただいた。

83

光合成研究24 (3) 2014

解説
活性酸素は生体分子にどう作用するか？— 酸化シグナルを伝える活性カルボニル種の生成と作用‡
山口大学 大学研究推進機構 総合科学実験センター
真野 純一*
活性酸素種（ROS）は、植物の環境ストレス傷害、ホルモン応答、発生、老化などさまざまな局面で細胞の運命を決定づける因子である。傷害因子としてまたシグナル因子として、ROSはどの生体分子にどう作用するのだろう
か？ROSは細胞内では膜脂質を酸化し過酸化脂質をつくる。過酸化脂質の酸化分解によって生成する多様なカルボニル化合物は、タンパク質に結合する性質をもっている。筆者は、環境ストレスを受けた植物の組織において反応性の高い「活性カルボニル種（RCS）」が増大し、その特異的消去酵素を過剰発現させると植物の環境ストレス耐性が強まることを見いだした。さらに、in vivoでRCSに特異的に修飾される標的タンパク質を複数同定した。これ
らの結果は、ROSの下流で生じるRCSこそが酸化シグナルを担う作用分子であることを示している。

1. はじめにInzé のグループである。 スーパーオキシドジスムター

酸素分子が還元されまたは励起されて生じる活性酸

ゼ（SOD）を過剰発現した植物の環境ストレス耐性を素種（ROS）は、植物の環境ストレス傷害、ホルモン示した彼らの一連の研究成果（ 1 9 9 2 年に総説） 1 ) に応答、発生、老化などさまざまな局面で細胞の運命

よって「環境ストレス傷害の原因は活性酸素」というを決定づける因子である。故浅田浩二先生は京都大

理解が広まった。彼らはAsada and Takahashi (1987)の学食糧科学研究所で1 9 7 0年代から四半世紀にわたっ総説「Production and scavenging of active oxygen inて「葉緑体での活性酸素の生成と消去」を追究し、

photosynthesis」2)に触発されてSODの実験を始めたと

葉緑体の活性酸素消去酵素系であるWater-water cycle

聞いている。この組換え植物実験の成果から、それまを確立された。この代謝系は現在ほとんどの植物生で着実に実証データが積み重ねられてきた葉緑体活性理学の教科書に記載されている。日本の研究が植物生酸素消去系の重要性が広く認められるようになった。

理学に本質的な貢献をおこなった好例だとおもう。

「活性酸素＝毒物」という図式は広まったが、細胞

筆者は浅田研究室に大学院生，助手として11年間在籍の酸化傷害プロセスの生化学はそれほど単純ではな

し、Water-water cycleが構築される過程を間近で見てく、現在もその究明が進められている。一方ROS研究きた。この過程の回顧は別の形でまとめた（光合成の先端は90年代にはROSのシグナル作用に移っていた学会ウェブサイト「私の論文」）。本稿では、ROSの（謎だった血管拡張因子の正体がN O・フリーラジカ

副産物である過酸化脂質由来「活性カルボニル種」

ルであるという 1 9 8 7 年の発見 3 ) がこのトレンドをつの生理作用について筆者が近年行ってきた研究を紹介くった）。 R O S のシグナル伝達（「酸化ストレス応

したい。

答」）機構の研究は動物や微生物の研究者が先行し、植物研究者はそれに追随するかたちだった。Montagu

2. 研究の背景ときっかけ

研のポスドクのDr. Sergei KushnirとDr. Elena Babiychuk

ROSが細胞毒性をもつという理解が植物生理学者の夫妻は、植物の酸化ストレス応答機構解明の目的で、間に広まったのは1990年代で、これに大きく貢献した

次のような実験を行った。出芽酵母S a c c h a ro m y c e sのはゲント大学のProf. Marc van MontaguとProf. Dirk

cerevisiaeのyap1 –株（酸化ストレス応答転写因子Yap1‡

解説特集「浅田先生を偲んで」* 連絡先 E-mail: mano@yamaguchi-u.ac.jp84光合成研究24 (3) 2014

を欠損し酸化ストレスに弱い）にシロイヌナズナ
c D N A を発現させ、この株の酸化ストレス耐性スクリーニングから、酵母の酸化ストレス応答シグナルを回復させるシロイヌナズナ遺伝子を同定しようとしたのである。この結果得られた新規遺伝子P1, P2, P3, P4のコードするタンパク質は、彼らの期待とは違い、そのアミノ酸配列からいずれもNAD(P)H依存の酸化還元酵素と予測された4)。このうちP1遺伝子（At5g16970）
は、シロイヌナズナの地上部で発現し、植物体への酸
図1 P1タンパク質（P1p）の触媒する酸化還元反応

化ストレス処理により発現誘導されることから、葉で抗酸化機能を担う新規酵素をコードすると考えられ元した。さらに基質特異性の解析から、このP1タンパ

た。Dr. Inzéから浅田先生にこのP1タンパク質の性質解

クはアルデヒドを還元するのではなく、アルデヒドの明の依頼があり、当時浅田研で助手を務めていた筆者

C=O結合に共役した-C=C-二重結合を特異的に還元すがその任に当たることになった。

ることが分かった（図1）。共役二重結合があるとカルボニル化合物の反応性は約10倍大きくなることが新規酵素2-アルケナールレダクターゼ

inP 1 タンパク質の生理的基質を解明すれば植物の新vitro実験から知られており、細胞毒性も強くなる（これを「活性カルボニル種；RCS」と定義した（図しい抗酸化防御機構の発見になる。大いに期待して研2））。P1タンパク質の生理機能はこのRCSの還元解究を始めたが、答は簡単には見つからなかった。ア

毒であると説明できる。新規抗酸化酵素の発見であ

ミノ酸配列からはキノンレダクターゼと予測でき、実る。やや興奮気味に4ヶ月程度でドラフトを書き（筆際いくつかの人工物キノンが基質となった。しかしプ者にしては最速）、2002年のPlant Cell Physiol.に掲載

ラストキノンやフィロキノンなど植物の主なキノンはされた 5 ) 。実はこの論文執筆中に全く同じ反応を触媒

基質にならない。Babiychukらが遺伝子スクリーニンするラット由来酵素の報告を見つけ（2001年11月のJ.

グのさい酵母にストレスを与えるのに用いた酸化剤

Biol.

diamide（図1）を還元する活性も見つかったが、このChem.掲載6)。一年遅れだった）、世界初の発見にはならなかった。それでも独自の発見であることを化合物も人工物である。手探り状態のなかで、2つ幸何か残そうと新規酵素名をI U B M Bの命名委員会に申運があった。まず京大・化研（当時）の中村薫先生

請し、ラットの酵素と並んで新規酵素番号EC 1.3.1.74

が d i a m i d e の構造からの類推でメチルビニルケトン

として登録された。推奨名は2-alkenal（図1）が基質となることを見つけて下さっ

reductaseとなた。筆者はこの新たに見つかった基質が脂質代謝物に似ていると感じ、山口大の松井健二さんに相談すると、類似構造をもつ(E)-2-ヘキセナールという過酸化脂質分解産物アルデヒドを提示してくれた。この化合物がP 1タンパク質の電子受容体として還元されたのである（図 1 ）。これが生理的基質の発見であった。2001年の10月30日のことで、P1タンパク質の実験を始めた1995年9月25日から6年もかかってしまった。
この(E)-2-ヘキセナールは過酸化脂質の酵
素分解産物のひとつだが、毒性をもつ。P 1

図2 活性カルボニル種（RCS）とその関連化合物群

タンパク質はこの化合物以外にも、共役二 脂質酸化分解産物のうち共役二重結合をもつカルボニル化合物をRCSと定義
重結合をもつアルデヒドまたはケトンを還 した。RCSは求電子性の高い「親電子物質（RES）」にも分類される。

85

光合成研究24 (3) 2014

り、現在はこの酵素名と略称「AER」（Eはalkenalの題が3つあった。すなわち、(1) 環境ストレスによって不飽和結合を表すeから）を用いている。

植物体内でどのようなRCSが増えるかというRCS生成について、(2)

AER過剰発現株ではRCS増大が少ないか？というRCSと傷害との因果関係について、そして

AERは植物の環境ストレス耐性を強める
AERは酵母の酸化ストレス耐性を高めるが、植物で(3) RCSはどのように植物細胞に障害をもたらすかとい

ストレス耐性に役立つのだろうか？Inzéのグループはう作用メカニズムについてである。

1997年にすでにシロイヌナズナP1タンパクを過剰発現動物に関しては1980年代からRCSの生体内での生成させたタバコを作成しており、それがパラコート耐性と毒性が研究されており、1991年のEsterbauerらの総を示すという結果も得ていたが、当時は耐性機構が説

説以降、4-hydroxy-(E)-2-nonenal (HNE) が過酸化脂質

明できなかったため投稿論文は却下されていた。P1タ

分解産物の主要な毒物として認識されるようになってンパクのAER活性でこの耐性メカニズムが説明できるいた。A E Rは他のカルボニル解毒酵素よりH N Eに対ようになった。強光耐性のデータも新たに加え、最初する特異性が高かった 5 ) ので、 A E R 過剰発現株ではの遺伝子単離から10年がかりでようやく植物での新し

HNE含量が低くなっているはずである。ただRCSにはい酸化ストレス防御能の論文がアクセプトされた 7 ) 。

H N E 以外に何種類もの化合物がある。このため、この論文は浅田先生も共著者であり、筆者としては、

RCSを網羅的に定量するHPLC解析法を開発することやっと（先生が京都大から福山大に移られて8年で）にした。2004年の卒論生から始め、卒論生3人が引継

浅田研時代からの課題を解決し、助手の務めを果たしぎ、学振外国人特別研究員のDr. Sergey A. Khorobrykh

た思いがした。これが結果として浅田先生との共著論の援軍も得て、4年がかりでカルボニルの抽出／誘導

文では最後のものになった。なお、この頃にはAERの体化／高分離溶離／定量法を完成した。細胞に存在

他にもアルデヒドデヒドロゲナーゼやアルド＝ケトレ

する 2 0 種以上のカルボニル種を網羅的に定量するこダクターゼといったカルボニル解毒酵素でも過剰発現とができ、いまのところ他所では得られないユニー

植物の環境ストレス耐性が報告され、環境ストレス傷

クな結果を生み出す強力な武器になっている。

害とカルボニル化合物の毒性との関係に注目する研究

この解析法によって、植物には猛毒であるアクロレ

者が少しずつ増えてきていた（表1）。

インやHNEなどのRCSが数μMレベルで含まれている
ことがわかった。これらのRCSはストレスをかけた植活性カルボニル種（RCS）のストレス傷害への関与

物で増大し、ストレス耐性のあるA E R過剰発現株でAERが植物のストレス防御に寄与することがわかっは増大しないはずである。しかし葉のカルボニルレ

たので、植物の環境ストレスにおけるRCSの重要性評

ベルはばらつきが大きく、またストレスによって減っ価を研究の新たな目的とした。これには解明すべき課てしまうなど、思ったような結果が得られない。結

表1 カルボニル消去酵素の過剰発現組換え植物のストレス耐性14)
ALDH，アルデヒドデヒドロゲナーゼ；AKR，アルド＝ケトレダクターゼ
酵素

遺伝子源

組換え宿主

耐性を示したストレス

発表年

ALDH

シロイヌナズナ

シロイヌナズナ

NaCl, 重金属, MV, H2O2

2001

ダイズ

シロイヌナズナ

NaCl, 乾燥, H2O2

2006

タバコ

NaCl, 乾燥, MV

トウモロコシタバコ

NaCl, 乾燥, CuSO4

2008

アルファルファ

タバコ

乾燥

2000

イネ

タバコ

UV-B, MV

2003

低温, カドミウム

2004

高温, MV2011

MV, 強光

2005

アルミニウム

2010

NaCl

2008

AKR

AER

シロイヌナズナ

タバコ

シロイヌナズナ

86

光合成研究24 (3) 2014

局、期待したストレスとRCSとの相関性は、葉ではな

果をまとめた宮武君の2006年の植物生理学会年会でのく根で最初に認められた。これは植物の酸化ストレ

発表にはかなりの反響があったが、投稿論文は4つのス耐性研究を行っていた鳥取大農学部（当時）の田ジャーナルにつぎつぎと却下された。この論文投稿時

中淨先生がAER過剰発現タバコで行った根のアルミニには、まだ上述した植物でのカルボニル定量結果がな

ウムストレス実験である。Alイオンによる根の伸長阻

く、RCSがストレス傷害因子であることを審査員に納害は、伸長領域のミトコンドリアでのR O S発生促進

得させることが難しかったのである。徹底的に書き直である。タバコ芽生えにAlストレスを与えると、根でして2009年にようやくPlantaに受理された12)。その後はHNE, アクロレイン、マロンジアルデヒドなどの数ある論文13)で、このPlanta論文を根拠として「植物に種類のRCSと、ホルムアルデヒド、n-ヘキサナールな

対するカルボニルの毒性は確立されている」と書いて

どのカルボニルが増大した。一方、A E R過剰発現株

あるのを見つけた。これは結構うれしかった。

はAlを加えてもカルボニル種の増大が小さく、そして上述の実験はしかし、単離葉緑体を用いたin vitroのA l耐性を示したのである。重要なのは、A l耐性を示「ぶっかけ実験」であった。RCSが光合成を阻害する

すA E R過剰発現株も感受性の野生株も、根に同じだ

ポテンシャルをもつことは示したが、葉の中で生じたけAlを蓄積し、同じだけ活性酸素を生成していたこと

RCSによって本当にストロマ酵素が失活するのか？とである。これは、A E R過剰発現株のA l耐性がカルボ

いう疑問は解決しない。まずin vivoでRCSに修飾されニル消去能に帰因できるという理想的な結果であっる標的タンパク質の同定が必要である。しかしRCS修た。厳しいレフリーに再実験も求められながらも、

飾タンパク質の同定には精度の高い二次元電気泳動／

田中研の博士課程の殷俐那さんはほぼ一人ですべてのイムノブロッティング検出とプロテオーム解析という2実験をやり遂げ、学位請求期限の一週間前にようやくつのテクニカルな関門があり簡単には始められない。

論文が受理された 8 ) 。同じ頃、葉で苦労していたカル

2011年の生化学会大会でポスターが隣同士になった新ボニルの解析でも、強光照射により増大し、A E R株

潟大（当時）の白矢武士さんが、iTRAQという定量的では増大しないRCSとしてアクロレインと(E)-2-ペン

差分プロテオーム解析を発表されていた。RCS修飾タ

テナールを同定できた9)。

ンパク質をRCS抗体カラムで集め、このiTRAQ解析を行えば、二次元電気泳動を必要としない。白矢さんと上司の三ツ井敏明先生のご好意により、たいへん高価

RCSの標的は何か？
RCSが増大すれば組織傷害が生じる。では、細胞内な標識試薬を使うこの解析を共同研究で進めてもらえ

では何がRCSの標的なのか？動物細胞ではHNEに阻害ることになった。問題は必要とされるタンパク量であされる標的としてミトコンドリアのリポ酸酵素などがる。R C S修飾されるタンパクは、ストレスによって増

90年代末には知られており、植物でもオーストラリア

えるとはいえ、細胞内のタンパク質の数パーセントにのA. H. Millarのグループが単離ミトコンドリアとHNE過ぎない。修士課程院生の永田光曜くんはシロイヌナ

を用いて同様の結果を得ていた10,11)。葉緑体へのRCS

ズナを大量に均一に育て、塩ストレス処理を行い、の影響を評価するため、ホウレンソウから葉緑体を単HNE修飾されたタンパクをHNE抗体アフィニティビー

離し，様々なカルボニルを加え、光合成の部分活性測

ズで集め、なんとかiTRAQ分析できるタンパク量を集定をおこなった。2 0 0 4年卒論生の平岡英司くんが始めた。甲斐あってHNEに修飾されやすい17種のタンパ

め、2005年卒論生の宮武史尊くんが熱意を持って取りク質が同定され、この成果は最近Plant Cell Physiol.に掲組んだこの研究では、ストロマのチオール制御酵素、

載された14)。塩ストレス条件でHNE修飾を受ける標的

とくにホスホリブロキナーゼがRCSによって敏感に失は葉緑体ストロマ酵素が多いはずと私たちは予測して活するのに対しチラコイド電子伝達系はRCSに強いこいたが、細胞質、ペルオキシソームのタンパク質の方と、そしてストロマのグルタチオンがRCSに対する第が多かった（図 3 ）。さらに意外なことにアポプラス

一の防御としてはたらくこと（一方、アスコルビン酸

トのタンパク質もHNE修飾を受けていたのである。こはRCS消去に役立たない）が明らかになった。田茂井

れは「塩ストレス→葉緑体での光過剰→葉緑体とペル政宏さん（近畿大）から貴重な基質をいただき、

オキシソームの活性酸素増大」というスキームでは説SBPaseも標的として失活することを確かめた。この結明できない。塩ストレスで活性化される細胞膜の87

光合成研究24 (3) 2014てきたと感じている。とはいえ、カルボニルの生理生
化学は生成、作用、消去のいずれに関してもほとんど未解明である。光合成に対するカルボニルの作用については山内靖雄さん（神戸大・院・農）17)、三宅親弘さん（神戸大・院・農）18)がそれぞれ先見性のある独自研究を展開されている。「カルボニルの伝道師」を自認する（？）筆者としては、もっと多くの方にカルボニル研究に参入していただき、日本の研究で世界を図3 シロイヌナズナの葉で塩ストレス時にRCS修飾が増大す
るタンパク質の細胞内分布

リードするようになればと願っている。

NADPHオキシダーゼがROS生成、脂質酸化に関わって

3. おわりにいるのではないかと考えている。標的タンパク質の浅田先生はご自分の研究を「葉緑体での活性酸素のRCS修飾と失活との関係は、今後詳細な解析が必要で生成と消去」とまとめられ、ROSの作用機構はあえてある。

追究しないというスタンスだった。筆者が推定するに、ROSと生体分子との反応に関する厖大なin

活性カルボニル種が酸化シグナルを伝える

vitro

データが当時すでに蓄積されていて、しかもそれは植以上のように、植物の酸化ストレス時に生成する物特有の生化学現象ではないと判断されたのではなか

R C S を同定し、それらの光合成に対する効果を評価

ろうか。しかし筆者は（勉強不足だったからなのだ

し、植物の環境ストレス耐性に対するRCS消去能の意

が）活性酸素の有害性にいまひとつ得心がいかず、活義を示すことができた。最初のA E R酵素活性の発見

性酸素消去系の重要性をイメージできなかったため、から 1 0 年かけて，これで「活性酸素の下流で生じる

浅田研在籍中、消去系研究にはほとんど携わらなかっ

RCSは植物のストレス障害要因のひとつである」と確た。浅田先生が活性酸素の作用の例に引くのは、H2O2信がもてるようになった。幸い機会を得て、この見解

を葉緑体に加えたときの光合成炭酸固定の失活 1 9 ) でを総説としてまとめた15)。

あった。しかしそれはカルビン回路チオール制御酵素

さて，「ROS → RCS → タンパクへの作用」というの可逆的酸化で、葉緑体にとって致命的な障害とはい図式を敷衍すると、環境ストレス傷害だけでなくROS

えないのでは？と筆者はいつも疑問に思っていた。その関わる他の生理現象にもRCSが関与すると考えられの後出会ったRCS研究によって、ROSの作用メカニズないだろうか？つまり「RCSは傷害因子というより酸

ムに関し発展的な知見を提供できるようになってき化シグナル物質である」という説である。バングラデた。この研究の機会を与えてくださったのは浅田先生

シュからの留学生Md. Sanaullah Biswasくんはこのテーであり、先生にはRCS研究の見通しがつくところまでマに取り組み、タバコ培養細胞で酸化刺激によって始

なんとか見届けてもらうことができた。長い間成果をまるプログラム細胞死にRCSがシグナルとして作用す

出さない弟子に対して苦言もおっしゃらず、ただ見ることを証明した。紙面の都合で詳細は書かないが、守ってくださったことに深く感謝し、ご冥福を祈りた

特異的なRCS消去剤で細胞内のRCSレベルを抑制するい。

と、酸化刺激でも細胞死は起こらないのである（投稿準備中）。さらにいくつかの植物ホルモンのシグナル伝達にもRCSが関与する証拠を最近得つつある。ROSがシグナルとしてはたらく現象は、他にも感染応答やReceived July 15, 2014, Accepted July 23, 2014, Published

導管要素形成などがあり、これらにもRCSが関与する

December 31, 2014

可能性は高いと考えている。植物でのRCSの重要性の理解は次第に広がっており（「reactive

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electrophile

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How do ROS act on biomolecules?
– Critical involvement of reactive carbonyl species as oxidative signal agentsJunʼichi Mano*

Science Research Center, Yamaguchi University89

光合成研究24 (3) 2014

解説
Water-water cycleと光化学系I循環的電子伝達〜 浅田浩二先生を偲んで‡
京都大学 生命科学研究科
遠藤 剛*
故浅田浩二先生の指導の下で始められたクロロフィル蛍光とP700酸化還元を指標とした光化学系I周辺の循環的電子伝達（CET）の測定法の開発研究は、その後の分子レベルでの解析へと発展し、半世紀に渡るCETの機能と構造の謎が解き明かされつつある。ここでは、CETの生理機能にしぼって、生葉でのCETの機能をWater-water
cycle（WWC）と比較して再考察する。CETの既知の2つの経路についての定量的理解が現状では不十分でありCET全体に占める寄与が不明である点、速度論的な解析データが報告されていない点等、現時点での解決すべき問題についても考える。

1. はじめにゲナーゼ（NDH）複合体を経由する経路とPGR5に依浅田先生の提唱された活性酸素消去系（Water-water

存する経路が現在までに明らかにされている。

alternative electron

最初に、浅田先生の研究室で行われたN D H複合体

transport（以下AET）と総称される電子伝達バイパスが関わる C E T の研究とその後の進展について概説すの一経路であるが、先生の研究は別のバイパス経路

る。シアノバクテリアのCETの研究では、NDH欠損株

である光化学系I（P S I）循環的電子伝達系（c y c l i c3) を用いることにより、呼吸電子伝達鎖の構成成分でelectron transport around PSI、以下CET）の解析にもつあるNDH複合体（NDH-1）が明所下ではCETに機能ながっていった。本総説では、植物葉緑体でのCETのしていることを明らかにしている4-7)。呼吸電子伝達鎖機能についてWWCと比較しながら考えたい。

と光合成電子伝達鎖が、キノンプール等を共有して相cycle、以下WWC）は、近年では

WWCをごく簡略に説明しておく。PSIIでの酸素発生互作用していることを実験的に証明することができたに伴う電子伝達フローの一部は不可避的にPSIで酸素点が評価されて植物生理学会 P C P 論文賞をいただい

分子を一電子還元し、活性酸素の一種スーパーオキシた。シアノバクテリアのNDH複合体については、最近

ドラジカルを生成するのだが、WWCでは、スーパーではAroのグループの研究により、サブユニット組成

オキシドジスムターゼとアスコルビン酸ペルオキシの異なる複合体が炭酸濃縮や呼吸に特化していること

ダーゼによりスーパーオキシドラジカルは水にまで還が明らかにされてきている8)。

元される。この還元反応にはPSIで生成した還元力が一方、陸上植物については、ご存知のようにN D H

利用される。浅田先生は、PSIIの酸化側の水の酸化的サブユニット遺伝子がシアノバクテリアを祖先とする分解に始まった電子伝達がPSI還元側で水の生成で終葉緑体ゲノムに残存している。発見当時、その機能がわることから、この電子伝達系路をWater-water cycle

謎であった葉緑体N D Hの機能も、シアノバクテリアと名付けた。この経路の詳細については浅田先生ごのCETを考えれば、容易に推定可能であるが、陸上植自身による総説 1 , 2 ) をご覧いただきたい。一方、C E T

物の葉緑体での N D H に依存した C E T については、とは、PSIで生成したフェレドキシンやNADPHといっ

Shikanaiらのグループとの共同研究によりその存在がた還元力をプラストキノンに渡す電子伝達系路で、後明らかになった9,10)。その後、Shikanaiグループをはじ述のように葉緑体チラコイド膜のNAD(P)Hデヒドロ

めとする内外の研究グループにより、機能と構造につ‡

解説特集「 浅田浩二先生を偲んで」* 連絡先 E-mail: tuendo@kais.kyoto-u.ac.jp90光合成研究24 (3) 2014

いての解析が大きく進展した。ただシロイヌナズナ
やタバコの葉緑体には、PGR5に依存したバイパス11)があるため、NDH欠損株でも表現型がはっきりしな
かった 1 2 ) 。一方、 AT P 要求性の高い C 4 植物では、NDH経路による循環的電子伝達の寄与が大きいようである 13) （後述）。植物葉緑体のNDHの構造に関しては、葉緑体ゲノムに発見された 1 1 個の遺伝子がコードするサブユニット以外に、多数のサブユニット遺伝子とサブユニットではないがNDH活性に必須なポリペプチドの遺伝子が核にコードされていることが近年になって見出されている。Ifukuらの総説 14)では、研究グループ毎に独自に命名していたサブユ
ニット名の統一化を図っている。
浅田先生のC E T研究については、光合成学会H Pの「私の論文」コーナーに、もう少し詳しい経緯を述

図1 光リン酸化反応としてのWWCとCET
電子伝達鎖では、電子伝達と共役した膜を介したプロトン輸送が起き、プロトン勾配を利用してAT Pが作られる。主要な光リン酸化反応である直線的電子伝達鎖（黒矢印）を補うためのサブシステムとしてWWCとCETの機能（赤矢印）が長い間想定されてきた。

べたので興味のあるかたは目を通していただきたい。
文を1992年に発表している16)。一方、Heber研究室で2.

足りないATPを補うのはWWCなのかCETな研究を続けていたSchreiber（PAMクロロフィル蛍光計のか？

の開発者として有名）は、CETではなくWWCが、ATP

C 3 植物が炭酸固定回路を連続的に駆動するために生成、熱放散系誘導の主要な機構であるとしていた。

は、二酸化炭素1分子の固定にあたり、3分子のATPと例えば、彼らのクロロフィル蛍光を用いた実験では、2分子のNADPHが必要である。一方、教科書的な光合W W Cの中途生成物である過酸化水素をホウレンソウ

成の「直線的」電子伝達鎖では、炭酸固定に必要なの無傷葉緑体に添加すると大きな p h o t o c h e m i c a l

ATPを生成するために十分なプロトン勾配が形成でき

quenchingを誘導することから、過酸化水素はPSIからないとされている。Qサイクルがフルに機能する場合のよい電子受容体として機能することを示した17)。すでも、H+/ATP = 4の仮定（例えばPetersenら15)参照）

なわち、直線的電子伝達フローのうち、かなりの割合

で、ATP:NADPHの生成比は3:2となり、炭酸固定回路

がP S IからM e h l e r反応で酸素分子の還元に使われ、の駆動にはギリギリ足りるが、光呼吸（ATP:NADPH

WWC経路で水に還元される可能性が示された。

要求比は5:3）を駆動できない。足りないATPを補うた

WWCとCETのどちらが重要かという論争に決着をめには、直線的電子伝達以外にプロトン勾配を作る仕つけるためには、それぞれのAETの定量的測定を生理組みが必要なはずであるが、その有力な候補として学的条件で行う必要があった。

WWCとCETが挙げられてきた。光リン酸化反応の重要なサブシステムとしてCETは、cyclic photophosphory-

3. WWCの寄与

photophosphory-

まず、WWCの定量的理解について考える。浅田先

lationと並び称されてきた（図1）。また、電子伝達と生の行った研究の中でも最も重要な実験のひとつ

共役して形成されるチラコイド膜内外のプロトン勾配

は、無傷葉緑体での電子伝達に伴うH 2 16 Oからの 16 O 2は、PSIIでの過剰エネルギーの熱放散系を誘導するトの発生（PSII）と 18 O 2 の吸収（PSI）を質量分析で分リガーとなるため、生理的条件でどちらかのAETが有別的に定量化したものである18)。炭酸固定が起こらな効に機能するならば、足りない A T P を補うのみならい条件で、無傷葉緑体に光照射すると 1 6 O 2 の発生とず、PSIIの過剰熱放散系を誘導して、PSIIを光阻害か

1 8 O 2 の吸収が拮抗する。これは、P S I Iでの水分解にら守る機能も併せ持つことになる。長らく、浅田先生

伴って放出された電子がすべてPSIでのMehler反応にと共同研究をされてこられた Würzburg大のHeberは、

よって酸素に受け渡され、活性酸素消去系により、水

この2つの機能（dual function）をCETが担うとした論に還元されていることの証明であった。すなわち、

lation、一方、WWCは、Pseudocyclic

91

光合成研究24 (3) 2014

WWCはPSIIで生じた電子を100%受容する潜在力をも

CRR2等の変異株を、またFQR経路についてはPGR5遺つことになる。しかし、生理的条件で炭酸固定や光伝子の点変異株が用いられた。それぞれ単独の変異

呼吸が起こる時に、in vivoでどれだけの電子がWWC

株は、通常の生育環境では野生型に近い正常な生育に関与しているかは、別問題である。藻類やシアノバを示すが、二重変異株は、ほとんど生育しない。単クテリアでは50-100%の電子がWWCへ流れる可能独変異株の解析からPGR5経路がシロイヌナズナやタ性が示されている 2,19) 。一方陸上植物の場合、藻類やバコ等のC 3植物では、主要な経路であり、それが機

シアノバクテリアより低いことは確かなようである

能しない時にはN D H経路が不完全ではあるが相補的が、いくつかのグループから異なった数値が報告されに機能する。主経路であるPGR5の変異株の詳細な解ている。OsmondとGraceは、強光下での電子フロー

析から、F Q R経路が機能しない場合には、チラコイ

は、WWC、光呼吸、炭酸固定のそれぞれにほぼ1/3ず

ド膜内外のプロトン勾配形成が不十分となり、プロ

つ流れていると、Hirschfeldia incana（アブラナ科）のトン勾配が引き金となるPSIIでの熱放散誘導が起こら葉を用いたCanvinらの実験20)をもとに見積もっている

ずクロロフィル蛍光のnon-photochemical21)。Asada2)やBadgerら19)も同程度の数字を妥当として（N P Q）形成機能が低下することが明らかとなったいる。一方でR u u s k aら 2 2 ) 、L a i s kら 2 3 ) 、D r i e v e rと11) 。この明確な表現型は、前述のHeberらによるCET

Baker 24)は無視できる程度の寄与しかないと結論づけのdual function説を実験的に証明したことになる。

quenchingている。最近、Shiraoら25)はこの問題に包括的に取りサブ経路であるN D Hの生理的機能は、未だはっき組むため多種の植物を対象とした研究を行い、WWC

りした決着がない。ただ、様々なストレス条件下でへのフローは1000 µmol photons m-2 s-1の強光下においN D H欠損株が不利であることが示されている。例えて、裸子植物で1 0 %、被子植物で1 %程度であると報ば、断続的な強光照射で、タバコのN D H抑制株が光告している。このように生理的条件でのWWCの電子阻害を受けやすいことが示されている27,28)。また、タフローがきわめて限定的であるとの結論がコンセン

バコやシロイヌナズナのN D H抑制株は強光照射でス

サスを得つつあるため、ATP生成への寄与も限定的でトロマに還元力が蓄積しやすい 27-29) 。Wangら 30) は低あると考えざるをえない。初期の研究では、炭酸固温と高温で、タバコのN D H抑制株が低い電子伝達活

定系が十分に機能していない無傷葉緑体を主な実験材

性を示すことを明らかにした。L iら 3 1 ) は、低温下で料としたことで、WWCを過大に見積もっていたこと

は、タバコN D H欠損株は、低光照度でも電子伝達活

が、今では理解できる。

性の低下が起こることを示した。最近、Ya m o r iら 3 2 )特定の代謝経路の機能を知るためには、それに関与は、イネのN D H抑制株で、低温下での光合成がかな

するタンパク質の発現抑制株を選抜または作製してそり低下することを詳細に解析している。またHorváthの表現型を調べるという逆遺伝学的手法が常用されるら33)は、水ストレス条件下で、タバコのNDH欠損株がが、残念なことにWWCにかかわる酵素の発現抑制の生育遅延を示すことを報告している。

研究では明確かつ予期した通りの表現型が現れること

FQRとNDHの欠損株の表現型は、程度の差はあるが少なく、明確な生理的な機能の解明にはむすびついが共通していて、それは電子伝達鎖およびP S I還元側ていない。

の還元力の過剰蓄積（いわゆる過還元）であり、PSIの光阻害（Sonoikeの総説34)参照）が引き起こされる状況と似ている（ F Q R については参考文献 1 1 を、

4. CETの寄与
一方、C E Tについては、明確な表現型を示す形質

NDHについては参考文献27-29を参照）。先に述べた転換体が得られている。ご存知のように、植物葉緑体ように直線的電子伝達では不十分なATP生成をCETがにはN D H経路とP G R 5（またはF Q R、f e r r e d o x i n

補っているとすると、CETの欠損はATP不足を招く。

quinone reductase）経路の2経路があり、それらが相補

炭酸固定系を駆動するためにはATPとNADPHを3:2の的に機能していることがShikanaiグループにより明ら割合で消費するため、ATPが不足するとPSI還元側でかにされたが、その研究では、それぞれの経路の発生成するNADPH等の還元力が使用されず余剰となっ現抑制株が利用された 11 , 1 2 , 2 6 ) 。N D H経路は、葉緑体てしまい、それが、酸化的傷害を誘引すると考えら

コードサブユニットの発現制御にかかわる核遺伝子れる（図2）。

92

光合成研究24 (3) 2014のC E T経路のほかに、ショートカットな経路の存在を示唆している。最も望まれる知見は、NDHおよびFQR経路の欠損株を用いた、in vivoでのCET速度の比較であろう。一方、NDH、FQR共に、膜に結合した複合体であるので、WWCを構成する酵素と異なり簡単な酵素化学的な速度論解析は困難と思われるが、これも将来取り組むべき課題である。
いずれにしても、生理的条件下での電子伝達速度を比較した場合、W W Cに比べC E Tは、大きな電子フローをもつことが明らかになりつつある。しかしながら、C E Tを効率よく駆動するためには、電子伝達鎖が適切な酸化還元レベルにある必要があり、その図2 CET欠損によるストロマへの還元力の蓄積を説明するためのために、WWCによるわずかではあるが無視できない仮説
直線的電子伝達では炭酸固定と光呼吸を駆動するためのATPが不 電子伝達活性が重要であるとの指摘もある38)。
足するため、CETがそれを相補するが、欠損株では、ATPが炭酸固定と光呼吸を律速してしまうため、NADPHが余ってしまう。
5. C4植物葉緑体のCET
直線的電子伝達ではATPとNADPHの生成比は調節できない。

C4植物では、炭酸濃縮機構を駆動するために、C3
In

vivoでのCET速度の測定としては、PSI反応中心

植物に比べて、炭酸 1 分子固定のため、 2 分子余分にクロロフィルP 7 0 0の作用光下での酸化レベルと飽和ATPが必要となる。CETが葉緑体でのATP生成に大き閃光を照射した際の酸化レベルの差から、PSI電子伝

く寄与するのであれば、C4植物はC3植物に比べて高達の量子収率（ΦPSI）を見積もるSchreiberら35)の方法

い C E T 活性をもつと推測される。こうした視点からと、クロロフィル蛍光からPSIIでの電子伝達の量子収

C 4植物葉緑体のC E Tは古くから注目を集めてきた。

率（ΦPSII）を見積もる方法36)を併用して、両者の差を浅田先生が初期のCET研究39)の材料としてトウモロコ

循環的電子伝達速度とする方法 3 6 ) が代表的であり、シを選択した理由もここにあるのだろう。

Walz社が発売しているDual-PAMでは、両者の同時測

植物のもつ2経路のCETのどちらが、C4植物で活性定を行うことができる。Miyakeら37)は、タバコの葉でを増大させているかを見るため、NDHとFQRそれぞは強光下ではΦPSI /ΦPSII比が1.8程度となり、CETは直れの活性に必須はタンパク質の発現レベルを幾種かの鎖状電子伝達鎖と同程度の速度をもつことを示していC 4 植物とタバコを用いて（少し乱暴だがシロイヌナ

る。また、こうして見積もられた循環的電子伝達速度

ズナタンパクの抗体を用いたウェスタン解析で）比較

はPSIIでの制御的熱放散の指標であるクロロフィル蛍したところ、タバコに比べてC4植物ではNDHタンパ

光のNPQ生成レベルと強い相関があり、上述のHeber

ク質（NDH-Hサブユニット）は10倍以上に増えていのCETによるPSIIの保護機能仮説を支持する結果でもたが、FQRタンパク質（PGR5）は、同じレベルであある。一方で、CETの定量法は原理の異なる手法がいり、C4代謝に要求されるATPは、NDH経路のCETでくつか報告されていて38)、それぞれの定量値にはかな作られている可能性が示唆された13)。筆者らは、京都りの差があることに注意をする必要がある。

大学宇治キャンパス（浅田研究室の所在地）とその周以上のように、変異株の解析では明確な表現型が観辺の植物を広く採集して、N D H活性の指標である光察されるCETではあるが、NDHとFQRの詳細な速度

照射後のFo’レベルの蛍光の一過的上昇を、半定量的論的解析は報告されておらず、LETに比較できる程度に比較した（未発表）。その結果、一般にC 4植物はの反応速度がこれら既知の経路のみで説明できるか

C3植物に比べて高いNDH活性を示すこと、マツ属等

否かは、今後解析が必要となる。言い換えれば、既葉緑体N D H遺伝子の欠落している植物には活性がな

知のNDHおよびFQR経路のみでCET活性の大部分をいこと等を確認した。PSII活性の高い葉肉細胞でATPカバーできるかのような議論は、いまのところ実験要求性が高いNAD-ME型C4植物は、総じて非常に高的根拠がない点に注意してほしい。Miyake38)は、既知

いN D H活性を示した。おもしろいことに、P S I I活性93

光合成研究24 (3) 2014の低い維管束鞘細胞でATP要求性が高いNADP-MEタ

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活性の局在性の関係が単純ではないことを示唆する結果であるが、その種間差の原因については詳細な解析を行っているところである。
NDH経路のCETがC4代謝に必須であるか否かを明らかにするため、現在、形質転換可能な C 4 植物
Flaveria bidentisを用いてNDHの核コードサブユニットの発現抑制株を作成し、解析している。同じ属に C 3
やC 3 - C 4中間種を含むF l a v e r i aを材料としたため、
NDHがC4代謝に必須であれば、発現抑制株はC3化するかと期待したが、実際には、C 4光合成を細々と行うがエネルギー不足で生育が遅延するという表現型であった（Ishikawa et al. 投稿準備中）。一旦、遺伝的にプログラムされたクランツ構造を伴う細胞分化
は、ATP不足という代謝環境でも可塑性を示さないと言うことだ。近い将来に大気CO2濃度がC4の優位性を奪う程度に上昇してもC4植物がC3植物に戻ることはできず、もはや無用になった炭酸濃縮経路を動かすコ
ストを支払い続けなければならないことになるのだ
ろうか。

6. おわりに
CETはArnonのグループが1950年代に提唱して以来40)、その分子的実態が長いこと謎であった。浅田先生

は、WWC研究のかたわら、光合成電子伝達研究に残されたブラックボックスのひとつとしてCETについても長いこと興味をもっておられたようであった。先生が1990年代初頭に始められたP700酸化還元やクロ
ロフィル蛍光によりCET活性を測定する研究が端緒となって現在の分子レベルでの機能と構造の解明が多いに進展したことは、忘れてはならない先生の業績のひとつと考える。
興味のある方は、本文中に紹介しきれなかったCETとWWCの機能を並列比較した総説38,41)、葉緑体NDHについての総説42)、CET装置の構造と機能についての総説43)をご覧いただきたい。

Received July 12, 2014, Accepted October 9, 2014,
Published December 31, 201494

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Tsuyoshi Endo*

Graduate School of Biostudies, Kyoto University

96

光合成研究24 (3) 2014

解説
これまで欠けていた、速度論的評価に基づく、
オルタナティブ・エレクトロン・フロー活性の比較と光合成におけるO2の役割〜生理的な意味が見える、本丸へ挑む〜‡
神戸大学 大学院農学研究科
高木 大輔 三宅 親弘*
高等植物における光合成電子伝達反応にはRubiscoに依存する直線的電子伝達反応（Linear electron flow; LEF）とは独立した代替的電子伝達反応（Alternative electron flow; AEF）が存在している。これまで多くの研究によってAEFの活性、生理学的機能、ならびにAEFに関与するコンポーネントを欠損させた植物における表現型解析などが行われてきた。しかしながら、確立されたAEFの測定手法が存在していないことから、高等植物におけるAEFの理解に関して、現在コンセンサスが得られていない状況である。本稿は野生型高等植物において確認されるAEF活性を速度にて評価し、高等植物の光合成におけるLEFの速度と比較することで、AEFの機能、光合成における貢献を考察する。加えて、AEFの生理学的機能の解明に当たり、解決すべき問題点に関して考察する。

1. はじめにであり、光合成の重要なシンクとして認識されてい高等植物の葉緑体に光が照射されると、チラコイる。一方で、光合成電子伝達反応にはRubisco依存的

ド膜上の光化学系II（PSII）、光化学系I（PSI）反応

な光合成電子伝達反応に加えて、Rubiscoに非依存的中心クロロフィルP680、P700の励起と電荷分離が起な光合成電子伝達反応が存在している。これは代替的

こり、光合成電子伝達反応が開始する。P 6 8 0から放電子伝達反応（Alternative electron flow; AEF）と呼ば出された電子はプラストキノン（P Q）、シトクロム

れる 1) 。高等植物における代表的なAEFとして、循環

b 6 f（Cytb 6 f）、プラストシアニン（PC）を介してPSI

的電子伝達経路（cyclic electron flow; CEF）とPSIにおへと伝達される。また P 7 0 0 から放出された電子はけるメーラー反応（water-water cycle; Mehler-ascorbate

フェレドキシン（Fd）、フェレドキシンNADPHオキ

peroxidase pathway; WWC）が挙げられる。CEFにおい

シドレダクターゼ（FNR）を介して、NADPHの生成てはArnonら、またTagawaらがチラコイド膜を用いたに利用される。光合成電子伝達反応はNADPHの生成

実験によって、PSIIからの電子の供給なしにPSIのみに加えて、ATPを生成する。PSIIにおけるH 2 Oの酸化の電子伝達でATPの合成が起こること、つまり循環的の際、また還元型のPQ（PQH 2）がCytb 6 fに電子を渡

リン酸化反応が起こることを確認したのが始まりです際にチラコイド膜ルーメン内部に H ⁺が放出されあり、現在では大きく分けると4つの経路があることる。チラコイド膜を介したストロマ側とルーメン側のが報告されている［NAD(P)H dehydrogenase (NDH),

H⁺勾配は、チラコイド膜上に存在するCFoCF1-ATPase

Ferredoxin plastoquinone reductase (FQR), FNR-Cytb6f

においてATP生成の駆動力として利用される。このよcomplex (proton coupled, heme c-dependent proton

う に して 光 合 成 電 子 伝 達 反 応 に よ り 生 成 さ れ た

uncoupled)］ 1-4) 。一方でWWCにおいては1951年に

cycleにおけるCO2の固定、Mehlerがチラコイド膜を用いた実験においてO2がHill

NADPHとATPは、Calvin

もしくは光呼吸に利用される。

oxidantとして機能することを発見したのが始まりであcycleならびに光呼吸は、光合成電子伝達反る 5) 。現在では、O 2 還元が起こるPSIでの活性酸素消応において生成されるエネルギーの主要な消費の場

去系、またアスコルビン酸（Asc）の再生反応系の存

Calvin‡解説特集「浅田先生を偲んで」* 連絡先 E-mail: cmiyake@hawk.kobe-u.ac.jp97

光合成研究在が明らかとされている6,7)。

24 (3) 2014

け取ることによって機能することから、PSI内部に電分子遺伝学、分子生物学の進歩により、AEFに関与子が蓄積することを防ぐ役割もあると考えられていするコンポーネントが次々と明らかになっている。一る。これはPSIにおける活性酸素の生成を防ぐという方で、問題とすべきことは、高等植物の葉緑体内に存意味で重要な防御機構である9-11)。

在する各種コンポーネントが、「真に生理学的に光

それでは、CEFはどれくらいの活性を持っているの合成に貢献しているかどうか」という事に対する考察であろうか？CEFにおける電子の供給源であるPSIはである。変異体の獲得は、表現型を介した考察によC E FのみならずF d，F N Rを介したN A D P Hの生成やり、各種コンポーネントが植物内部でどのような役割

WWCにおけるO 2還元などに電子を供給している。つ

を果たしているかを明らかとする非常に強力なツール

まりCEFの活性はCEFに分配される電子の量によってである。しかし、そこには量と質の考察が軽んじらも大きく左右される12-14)。光合成の誘導期においてはれている場合が多い。つまり、各種コンポーネントのCalvin「ある」、「なし」に重きをおいて議論が展開されて電子のシンクが完全に活性化する前の段階の為、電いるといってよい。発見された遺伝子、タンパク質の子はよりCEFに分配されることが予想される15,16)。一植物細胞内部における真の機能を明らかとするに方で、定常状態の光合成においては多くの電子がは、それらが質的または量的に生理現象を説明しう

Calvin cycleや光呼吸に供給される為、CEFの活性は誘るのかという考察が必須である。今回は、高等植物

導期に比べて低下する。このことを踏まえて光合成のの葉緑体での代表的なAEFであるCEFとWWCに焦点誘導期と定常状態に分けてCEF活性を考察したい。

cycleや光呼吸といった光合成における大きなを当て、野生型植物において観測されるAEF活性、特に速度の面からAEFの考察を行う。

A. 光合成誘導期におけるCEF活性
最初に光合成の誘導期、つまりCalvin cycleが活性化する前の光合成電子伝達反応におけるCEFの速度につ2. CEFの電子伝達活性評価
現在、高等植物において提唱されているCEFの生理

いて紹介する。Joliotらは暗所に順応させた野生型のホ学的機能を紹介する。CEFはPSIから出た電子を再び

ウレンソウ並びにシロイヌナズナの葉に約7秒間、強力

光合成電子伝達鎖上に戻す電子伝達経路であり、P Q

な励起光を照射し、その時に観測されるElectro chromicに電子を伝達する経路に関してはQ-cycleを活性化さ

shift（ECS）のシグナルとDark interval relaxation kinetics

せる事によって、チラコイド膜ルーメン内部へのH⁺の(DIRK)

取り込みを促進させ、 H ⁺依存的な非光化学的消光見積もっている17-20)。その報告によると、光合成誘導（NPQ:qE）やCO2固定のためのATPの合成に貢献す

期のホウレンソウの葉では、68 s-1のCEF活性と26 s-1のると考えられている8,9)。またCEFはPSIから電子を受

L E F活性が検出され、シロイヌナズナの葉においてはanalysisを組み合わせて光合成電子伝達活性を

表1 LEF, CEF, WWCの速度比較

LEF

CEF

WWC

NO2- reduction

ターンオーバー速度（s-1）

植物

測定条件

参考文献

〜 300

タバコ

光合成定常状態

Laisk et al. (2001)21)

〜 200

ヒマワリ

光合成定常状態

Laisk et al. (2001)21)

〜 200

n.d.

personal communication

Joliot et al. (2004)18)

〜 200

タバコ

光合成定常状態

Hald et al. (2008)22)

ホウレンソウ

光合成誘導期（このときLEFは26 s-1)

Joliot & Joliot (2002)17)

119 〜 130

シロイヌナズナ

光合成誘導期（このときLEFは40 s-1)

Joliot et al. (2004)18)

〜7

タバコ

光合成定常状態

Laisk et al. (2001)21)

〜 15

ヒマワリ

光合成定常状態

Laisk et al. (2001)21)

〜 200

ジャガイモ

光合成定常状態

Laisk et al. (2007)10)

〜 306

タバコ

光合成定常状態

Miyake et al. (2005)27)〜9

サヤインゲン

光合成定常状態

Driever & Baker (2011)79)

〜2

ユーカリ

光合成定常状態

Shirao et al. (2013)80)

〜 31

セコイア

光合成定常状態

Shirao et al. (2013)80)〜2

タバコ／ジャガイモ

光合成定常状態

Eichelmann et al. (2011)37)68

98

光合成研究24 (3) 2014

119 ~ 130 s-1のCEF活性と40 s-1のLEF活性が検出されて起きていると考えられている1 6 ) 。暗所に順応させた葉いる（表1）。ここでのs -1という単位は1秒間にPSIIもにおいてはP700+の酸化は大きく遅れるが、一方で光にしくはPSIが、どの程度電子伝達反応を行っているのか順応させた葉において F R を照射した場合には、を表す（回転数 [反応中心]-1 s-1）。また、これら植物

P 7 0 0 + はすぐさま最大のレベルまで誘導される（図の葉にDCMUを吸引させ、PSIIからQAへの電子伝達を1A）。この光に順応させた葉におけるP700 +の誘導の阻害した葉においても117 ~ 128 s-1のCEF活性が検出さキネティクスは、葉にメチルビオロゲンを吸引した場れている。定常状態におけるLEF活性は ~ 200 s-1ほどの合に確認されるキネティクスと同じであることから、速度で駆動することから、Joliotらが検出した光合成誘

光順応後の葉においてはFR照射により生成する電子の導期におけるCEF活性は定常状態のLEF活性に相当すほとんどがLEFに供給されており、CEFの活性はほとるほどの高い活性を持っていることが分かる17,18,21-23)。

んど存在しないことが見て取れる（図1B）16)。このよ
うに光合成電子伝達反応においてCalvin cycleや光呼吸

B. 光合成の定常状態におけるCEF活性といった大きな電子のシンクが活性化した場合に、非ストレス下の定常状態におけるCEF活性に関してCEFに供給される電子が減少することでCEFの活性がは、未だコンセンサスが得られておらず、定常状態に低下するという報告は他にも存在している13,15,24) 。例

おいてCEF活性が存在するかしないかに関しては明ら

えばLaisk らはLEFとCEFの活性をPSIの回転数（s-1）にかとなっていない。コンセンサスが得られない原因と換算して比較を行っている。測定光が約しては、確立されたCEF活性の測定方法が存在していphotons m-2 s-1の条件下におけるCEFの活性は強光生育ないことが理由として挙げられる。また、報告されての植物でLEFの -5.5 ~ 7.5%、弱光生育の植物で -1.4% ~いる定常状態のCEF活性に関しては、いくつかの解決

12.2%であることを報告している。この時のLEF活性はしなくてはならない矛盾点が存在している。

強光生育の植物で約200 s-1、弱光生育で 100 s-1程の速

2,000

µmol

CEF活性の評価として、Far-red light（FR）を照射し度が確認されているため、CEF活性を速度に換算する

た場合に観測されるP700+の誘導のキネティクスによりと強光生育の植物では ~ 15 s-1、弱光生育の植物では ~評価する解析方法が知られている（図1）16)。この解析

12 s-1 程の活性となる21)。またKuvykinらは光合成電子

ではFRを照射した場合に確認されるP700 +生成の遅延伝達反応における各種反応の見かけの速度定数を用いの程度からCEF活性を評価する。このP700+生成の遅延てin silicoにて定常状態のCEF活性を算出しているが、はFRにより電荷分離を起こしたP700+に、CEFによってその計算においてもCEF活性はLEFの10%未満であるこ

循環してきた電子が再度P700+に供給されることによりとを報告している25,26)。
一方で、定常状態においても高いCEF活性が存在していることを示唆する報告もある。
Laiskらがガス交換測定から算出する光合成電子伝達速度とP700+のDIRK-analysisから見積
もるPSIにおける光合成電子伝
達活性と比較したところ、強光条件下においてCEF活性の増加が確認され、速度にして 4 0

図1 FR照射によるCEF活性の評価
Joliot & Joliot (2005)をもとに作成。Aはホウレンソウの葉に150 mMソルビトールを吸引させたものと、ホウレンソウの葉に150 mMソルビトールと1 mMメチルビオロゲンを吸引させたものにおけるP700 +の誘導のキネティクスを示したもの。P700 +は遠赤外光の照射により誘導している。Bはエンドウの葉を暗所に順応させたものと、緑色光の照射によりCalvincycleを活性化させた状態にし、その後5分暗所に置いたものにおけるP700+誘導のキネティクスを示す。

99~ 100 µmol e- m-2 s-1程の活性が確認されている 10) 。Laiskらが報告している葉面積当たりのPSIの量（0.5 ~ 1.8 µmol m-2）を参考にして、回転数に換算すると大凡 20 ~ 200 s-1となる

光合成研究24 (3) 2014

（表1） 10,21) 。この値から考えると、これらの論文でのH 2 Oが酸化された場合、流れる電子の量は4電子な報告されているCEF活性はLEFに相当することが分かので、これに伴いQ-cycleにおいて取り込まれるH⁺のる。M i y a k eらはクロロフィル蛍光測定より見積もる

数は、8H⁺［4e- × 2H⁺/e-］となる。2分子のH2Oの酸化

PSIIの量子収率と830 nmにおける透過率変化から算出

により供給される4H⁺と合わせると、LEFで生成されするPSIの量子収率からCEF活性を評価しており、そるH⁺は12H⁺となる。

の報告によると~ 153 µmol e- m-2 s-1（~306 s-1）程の問題は高等植物の葉緑体のATPaseがATPの生成にど

C E F 活性速度が定常状態の光合成で観測されている

れだけH⁺を必要とするかである。Seelertら（2000）の（表1）27)。PSIIとPSIの量子収率から見積もるCEF活

報告ではホウレンソウ葉緑体におけるATPaseのcリン性に関しても、光強度の増加はCEF活性の増加を引き

グは14個あることが報告されている33)。この報告にし起こすことが確認されている28-30)。

たがって3分子のATPの生成に14H⁺が必要であると仮ここに示したように光合成の定常状態におけるCEF定する。その場合、LEFでは12H⁺しか取り込めないの

活性の報告には、ばらつきが存在する。これは生育で 2 H ⁺不足している状態となる。この考察に基づく

環境（光、窒素量、温度等）の要因によっても変化すと、CEFが存在することによって2H⁺が補充されるがるが、やはり個々の測定法の違いが大きな原因であ故に、Calvin

ろう。ただし、ここで注目すべきは定常状態でCEF活的論的に理解できる。

cycleは問題なく駆動しているように目性があるという報告に関しては活性のオーダーが一致

しかしながら、定常状態において確認されるCEF活している、つまりLEF活性に相当する活性を示してい性にはいくつかの矛盾点が存在する。第一に、仮にるという事である。

CEFがLEFで生成するH⁺の不足分を補っているのであれば、CEFは光強度にかかわらず、常に駆動している

3. CEFはH+の取り込みに貢献しているか?

必要がある。理論的には常にLEFの約14%に相当する

次に野生型の植物において確認されるCEF活性が光

CEF活性が確認されていなくてはならない。しかし、合成におけるH⁺の取り込みを促進し、in vitroで確認さ前述のように弱光条件下においてはCEF活性が確認されたようなATPの供給に貢献することで、CO 2固定をれないという報告が存在している 9,10,21,34) 。この報告

サポートしているのかを考えたい。最初にCalvin cycleを考慮するとCEFが Calvin cycle駆動を駆動するに当を駆動させるために必要なNADPHとATPの量に関してたって、恒常的に不足しているATP合成をサポートし整理する。Calvin cycleにおいて1分子のCO2を固定するているとは考えにくい。

ためには3分子のATPと2分子のNADPHが必要となる

大気中のCO 2濃度の変化は葉内、並びに葉緑体内部

31)。続いて、LEFにより生成されるNADPHとATPの量のCO2とO2の分圧の変化を引き起こし、Rubiscoにおけについて考える。光合成電子伝達反応ではPSIIにおいるカルボキシレーション反応とオキシゲナーゼ反応のて、2分子のH 2 Oが酸化されるとそれに伴って4つの電バランスに変化をもたらす31)。光合成におけるATPと子と4つのH⁺の放出が行われ、1分子のO 2 が発生する

NADPHの要求量はKramerとEvans（2011）で記載され［2H2O →O2 + 4H⁺ + 4e-］。1分子のNADPHの生成にているように 3+7Γ*/C (ATP)，2+4Γ*/C（NADPH）とは電子を2つ必要とする［NADP+→

表現することができる35)。ここでのΓ*は暗呼吸を考慮

NADPH］。したがって2分子のH 2 OをPSIIにおいて酸しない場合の、光合成における C O 2 補償点、 C は化した場合、4電子が流れるのでNADPHは2分子生成

Rubisco周囲におけるCO2分圧を示す36)。つまり、葉内される。このことから、2分子のH 2 Oの酸化により駆のCO 2濃度が低くなりカルボキシレーション反応が抑動するLEFで3分子のATPを生成することができれば、制され、オキシゲナーゼ反応が促進されるような条件

L E Fのみで1分子のC O 2 の固定を行うことが可能であ

下では、NADPHに対してATPの要求量が増加することる。PSIIにおける電子のアクセプターであるPQはPSIIが分かる35)。この時ATP/NADPH比は大凡1.67まで上昇とCytb6 f間でQ-cycleを行っており、この機能によってするので、低CO 2条件下では、現在の大気条件下にお電子伝達反応によるH⁺の取り込みが促進される。Q -いて光合成を駆動する場合よりも多くのATPが要求さ

cycleにおいて電子が1つ流れると2つのH⁺が取り込まれる。このことからC E FによるH⁺の取り込みの貢献れる (H⁺/e- = 2) 32)。光合成電子伝達反応により2分子は、低CO 2 条件下で、より重要度が増すことが予想さ

+

H⁺

+

2e-

100

光合成研究24 (3) 2014

れる。しかしながら、非ストレス条件下においてCEFしていると仮定し、LEF活性から見積もるH⁺要求速度活性を測定した論文に関しては、 C O 2 の変化に伴うとの比較を行っている 1 1 ) 。その条件下で観測されるCEF活性の変化は確認されていない10)。Miyakeが2005

LEF活性は5 µmol e- m-2 s-1、CEF活性は50 ~ 70 µmol e-

年に報告した論文では、高い光強度の条件下（1 , 1 0 0

m-2 s-1であった。上記と同様の計算をすると、LEFでµmol photons m-2 s-1）ではCEF活性は低CO2条件下におATPの合成に要求されるH⁺取り込み速度は17.5

いて増加することが確認されている。しかし一方で低H⁺ m-2 s-1であり、LEFで達成されるH⁺取り込み速度はい光強度（150, 250 µmol photons m-2 s-1）の条件下では15 µmol H⁺ m-2 s-1 となる。つまりこの条件下で要求さCEF活性はCO 2 濃度に依存しないことを見出している

れるCEFによるH⁺の取り込み速度はわずか2.5

29)。前述のように光合成におけるATPとNADPHの要求

H⁺ m-2 s-1 でよいが、観測されたCEF活性をもとに計算量はΓ*とCに依存するため、CEFがATP合成に関与す

するとH⁺取り込み速度は100 ~ 140 µmol H⁺ m-2 s-1 にまるのであれば、光強度ではなくCO 2の濃度の変化に応で達すると報告されている11)。低O2下で光呼吸が抑制

答しなくてはならないはずである。

されることと、窒素同化のフラックスを考慮する

以上の報告を含めるとC E FはH⁺の取り込みとカッ

µmol

µmol

と、C E FによるH⁺の取り込み速度は過剰であること

プリングしているとは考えにくい。それでは、今までが示唆される。

とは反対の発想で、 C E F が完全に H ⁺の取り込みとCalvin cycleで要求するATP合成速度に相当するよう

カップリングしていることを仮定した場合に、矛盾はなATP消費経路が存在しなければ、CEFの駆動によっ生じるのであろうか。Laiskらが2007年に報告した高てチラコイド膜ルーメン側に絶えず H ⁺が流入するこCO 2条件下におけるガス交換測定より算出した、LEFととなる。 H ⁺の要求量以上に H ⁺が取り込まれると速度200 µmol e- m-2 s-1とその時のCEF活性約100 µmol

ルーメンのp Hが大きく低下することが予想される。

e- m-2 s-1をもとに考察する。以下の計算は、Laiskら

ルーメン側のpHの低下はPQとCytb 6 f間の光合成電子（2010）で用いられたものを適用した11)。LEF速度を

伝達を大きく抑制する 3 8 ) 。さらに、ルーメン側のp H

ATP要求速度に変換すると、［200 µmol e- m-2 s-1 / 4 ×の低下はCytb 6 fにおける光合成電子伝達のみならず、

3 = 150 µmol ATP m-2 s-1］となる。これをATP合成の

PSIIのOxygen evolving complex（OEC）、プラストシ

為のH⁺要求速度に変換すると、［150 µmol ATP m-2 s-1

アニン（P C）の分解を誘導する 3 9 ) 。つまり、C E Fが× 4.66 (H⁺/ATP) = 699 µmol H⁺ m-2 s-1］となる。このとH ⁺の取り込みとカップリングしているのであれば、き、L E F活性によって達成されるH⁺の取り込み速度

すぐさまルーメン側の p H が低下することによって、は、［200 µmol e- m-2 s-1 + 200 µmol e- m-2 s-1 × 2 (H⁺/e-)

PQ-Cytb6f間の光合成電子伝達反応が抑制、PQ-poolに= 600 µmol H⁺ m-2 s-1］となるので、Calvin cycleを駆動

おける電子の蓄積、ならびにP S I I、P Cの機能が抑制するためにCEFは99 µmol H⁺ m-2 s-1 の速度でH⁺の取りされることによって、CEF自体も駆動できなくなるは込みをサポートする必要が考えられる。この時CEFのずではないだろうか1,40,41)。

活性は100 µmol e- m-2 s-1であるのでH⁺取り込み速度に

上記の予想は、以下の論文によってサポートされ換算すると［100 µmol e- m-2 s-1 × 2 (H⁺/e-) = 200 µmol

る。そもそも、葉緑体のATPaseはH⁺の結合するcサブ

H⁺ m-2 s-1］になることが分かり、要求される速度の2ユニットは14個あるが、これは必ずしも3ATP作るの倍の速度で H ⁺の取り込みが行われていることになに 1 4 H ⁺が必要であることを示しているわけではなる。測定条件が高CO 2であることを考慮すると光呼吸

い。Steigmillerら（2008）やPetersenら（2012）ではホの駆動のためのATP合成に使われている可能は低い。

ウレンソウから単離したATPaseを利用して、H⁺/ATP

一方で葉緑体内部における窒素同化にもATPが利用さの比を計算している。Steigmillerらは3.9±0.3, Petersen

れるが、そのフラックスは光合成の速度と比較する

らは4.0±0.3の値を得ている42,43)。つまり、CEFがH⁺のと低い為、過剰に取り込まれた H ⁺のすべてが窒素同取り込みに貢献しなくてもLEFの駆動によるH⁺の取り化を行う為のATP合成に使われているとは考えにくい込みのみでCO 2の固定は可能であることを意味する。

（~ 1.0 µmol m-2 s-1）37) （表1）。

実際にAvensonらの報告によると、LEFで形成される

また、Laiskらは低CO 2、低O 2条件下でFR照射によproton motive force (pmfLEF)とトータルのECSシグナル

り観測されるCEF活性がH⁺の取り込みとカップリング（total pmf）の間には直線の関係があることを報告し

101

光合成研究24 (3) 2014ている。例えば、C E Fが強光下で促進し、それがH⁺の取り込みに貢献するのであれば、LEFで形成される
pmfに加えて、追加的にpmfが増加するはずである。つまり、定常状態において、光強度の変化に応答する
C E F活性の変化はチラコイド膜を介したH⁺勾配の形成に関与していない可能性がある44-46)。
一方で、Furbank、Badgerらがチラコイド膜を用いた実験によって算出したATP/2e -の比は1.39であり、4電子流れた場合には2.78ATPしか生成できないことを示している47)。この報告は、3分子のATPの生成のために

図2 クロロフィル蛍光を用いたNDH依存型CEF活性の評価
Hashimotoら（2003）48)をもとに作成。励起光の消灯後に確認されるクロロフィル蛍光のキネティクスを示す。野生型で励起光消灯後にクロロフィル蛍光の上昇が観測されるのは、励起光照射中に葉緑体ストロマに蓄積した還元力（NADPH, Fd）が、NDHを介してPQプールに電子を伝達するためと考えられている。実際にN D H複合体の変異体においては野生型で確認されるようなクロロフィル蛍光の上昇は確認されない。

は、14H⁺が必要であることを示唆する結果である。この報告に基づくと、光合成の駆動に当たってはCEFによる追加的な H ⁺が必要であることが示唆される。
Calvin cycleや光呼吸に必要とされるATPの合成にH⁺がどれだけ必要となるかについては、現在も決着のつかない難題である。

4. CEFを制御するのはNDH complexとPGR5 –NDH複合体の量は大凡その100分の1と見積もれるの

PGRL1 proteinか?

で、5 ~ 18 nmol m-2となる。これがLaiskらの報告

野生型植物で観測されるCEF活性はLEF活性に匹敵（2007）の中の、野生型植物で確認されたCEF活性40するという報告があることから、高い電子伝達活性~ 100 µmol e- m-2 s-1の電子伝達反応を行おうとする場を説明しうる分子メカニズムでなければCEFの機能解合、NDH複合体のターンオーバーは［40 ~ 100 µmol e-

明に至ったとは言えない。現在、 C E F に関わるコン

m-2 s-1 / 0.005 ~ 0.02 µmol m-2 = 2,000 ~ 20,000 s-1］とな

ポーネントとしてはNDH複合体とPGR5、PGRL1タン

り、 NDHは2,000 ~ 20,000 s-1 の速度で電子を伝達しなパク質が挙げられる8,9,48-50)。これらのタンパク質の存くてはならないことになる10)。Joliotら

在は野生型植物で観測されるCEF活性を説明できるで

N D Hの活性は、そのタンパク質量を考慮すると理論あろうか。

的に約10,000 s-1の活性が必要であると提案されている(2004)でもN D Hは複数のサブユニットからなる巨大な複合体18)。LEFのターンオーバー速度が約 200 s-1であることであり、近年Fdの結合部位の存在が報告された51,52)。

から、タンパク質量に基づいて算出されたこの活性はこれらの報告からN D Hは光合成電子伝達反応に関与

生理学的に高すぎる。

することが示唆される。しかしながら、チラコイド

NDHの活性はinvivoで測定可能であり、励起光消灯膜におけるNDH complexの量はチラコイド膜のタンパ

後のクロロフィル蛍光の上昇によって N D H の活性のク質の0.2%に相当し、光合成電子伝達鎖100個につき「有無」が議論されている（図2）8,52,54)。今度は逆に、1つの複合体がついている計算となる53)。Laiskらが見この評価系から見積もられる活性から、必要とされる

積もるPSI量（0.5 ~1.8 µmol m-2）を参考にすると、

NDH複合体の量を計算してみる。クロロフィルの蛍光表2 NDH, PGR5, PGRL1, PTOXの速度比較
ターンオーバー速度（s-1）

植物

測定条件

参考文献

1

シロイヌナズナ

励起光消灯後Gotoh et al. (2010)54)

0.1

トマト

クロロフィル蛍光 Kautsuky effectTrouillard et al. (2012)55)

PGR5

0.035

シロイヌナズナ

In vitro

Fisher & Kramer (2014)57)

PGRL1

〜3

リコンビナントタンパク質

In vitro

Hertle et al. (2013)50)

PTOX

0.2〜0.25

トマト

クロロフィル蛍光 Kautsuky effectTrouillard et al. (2012)55)

NDH

102

光合成研究24 (3) 2014の上昇はストロマ中のNADPHがNDHを介してPQへと

クロロフィル蛍光の増加は、全くもってPQのredoxの移動するために光合成電子伝達鎖が還元状態となるこ

変化ではない。この報告から考えるに、PGR5がCEFとで起こると考えられている 4 8 ) 。このことからクロロに関与する可能性は低い。この主張に関しては以下のフィル蛍光の上昇の速度がNDHの活性であると考えら

論文も参考にしてほしい58,59)。このことを考慮するとれる。クロロフィル蛍光の上昇のハーフタイムから算新たなPGR5タンパク質の機能の考察が必要であるこ

出されるターンオーバーは Gotohら（2010）では 1 s-1ととが示唆される。一方で、Okegawaらは単離葉緑体を見積もられている（表2）54)。またTrouillardら（2012）

用いた実験で、弱光下における P G R 5 依存的な C E F

ではNDHの活性は 0.1 s-1と見積もられている（表2）が、光合成定常状態の光合成速度と競合できるほど55)。この活性でこれがLaiskらの報告（2007）の中で報の活性を持つことを示している60)。この対立議論の解告されているCEF活性 40 ~ 100 µmol e- m-2 s-1を達成しよ決のためにもin vitro並びにin vivoにおいてLEFとCEF

うとすると［40 ~ 1,000 µmol m-2］のNDH複合体が必要の活性を「速度」にて同時に測定する技術の確立がとなる10)。Rubiscoの量が ~ 7 µmol m-2 程であることを考必要である。また、Okegawaらの報告の中では、野生慮すると、見積もられる量のNDHが葉内に存在してい型シロイヌナズナとPGR5欠損シロイヌナズナから単るとは考えにくい56)。これらの計算からNDH複合体の離した葉緑体は、Fd、NADP +存在下で同様のO 2発生

活性では野生型植物で見られるC E F活性のすべてを説

速度を示すが、クロロフィル蛍光から見積もるPSIIの明することは、不可能であることが示唆される。

量子収率が両植物の間で大きく異なることを見出して

PGR5, PGRL1が関与するCEF活性もin vitroのクロロ

いる60)。PGR5タンパク質の有無が見せるPSIIに関す

フィル蛍光によって評価される9,49,50)。これもNDHの活るこの事実は、PGR5が担う生理学的機能の考察を行性評価と同様に電子がF dを介してP Qへと移動するた

うに当たって非常に興味深いものといえる。Fisherとめに光合成電子伝達鎖が還元状態となり、クロロフィ

Kramer（2014）が提唱するように、PGR5がPSIIと相ル蛍光の上昇が起こると考えられている。しかしこの互作用しているのを反映しているのかもしれない。

クロロフィル蛍光の上昇の半減期は非常に遅く、回転数に換算すると約 0.035 s-1と見積もられる（表2）57)。

5. In vitroにおける光合成電子伝達反応とO2依存

一方で、 大腸菌において精製したPGRL1のタンパク質

的電子伝達活性の回転数は ~ 3 s-1であることが見積もられる（表2）

高等植物の光合成電子伝達反応には、PSIにおいて

5 0 ) 。 P G R 5 欠損シロイヌナズナ変異体、ならびにO2が電子のアクセプターとして機能することにより光PGRL1AB欠損シロイヌナズナ変異体においては生育

合成電子伝達反応を促進させる W W C （ M e h l e r -の低下、L E F活性、N P Qの誘導が大きく抑制され、

Ascorbate Peroxidase pathway）が存在している6,7,61)。

PSIにおいては電子の蓄積が確認されている9,49)。しかP S I において O 2 に電子が供給されると反応性の高いしながら、PGR5、PGRL1がもつCEF活性は、LEF活性

スーパーオキシドアニオン (O2-）が生成されるが、チならびに野生型植物で観測されるCEF活性とは程遠い

ラコイド膜上または葉緑体ストロマに存在するスー

為、野生型シロイヌナズナとpgr5, pgrl1ab変異体の違パーオキシドジスムターゼ（SOD）によって不均化さいがCEF活性の違いとして説明することはできない。

れることによりH 2 O 2 へと変換され、その後チラコイ

またFisherとKramer（2014）は、このPGR5依存的

ド膜、ストロマ中に存在するアスコルビン酸ペルオ

CEF活性評価がPQへの電子の伝達ではなくPSIIへの電キシダーゼ（APX）によってH 2 Oへと変換されること子の伝達を意味することを明らかとした57)。ヒドロキにより、無毒化している62-65)。

シアミンとDCMUを処理したサンプルはPSIIからPQ

このO2依存的電子伝達反応に関しては単離葉緑体をへの電子伝達が抑制されている為、P Qにおける電子用いた実験が多くなされている。In vitroで観測されるの蓄積はPSIIから発せられるクロロフィル蛍光に何のO2還元のKmは ~ 10 µMと低く、非常に少量のO2でも影響も与えないことが考えられる。しかしながら、反応は進行し、単離葉緑体や単離チラコイド膜を用い

PGR5-dependent CEFと思われるクロロフィル蛍光の上て測定されるO2還元速度は約 20 µmol O2 (mg Chl)-1

昇は、それらの処理を行った単離葉緑体でも増加すh-1 であることが過去に報告されている47,61,66-69)。このることを見出している。つまり、この評価方法による

速度は単離した葉緑体において電子のアクセプターを103

光合成研究24 (3) 2014

O2に限定した場合に観測される速度であり、NADP+やへ、光合成にとって不可欠で有益なものである

P G A、H C O 3 - の存在下では、O 2 還元速度は低下するという概念を与えたUlrich Schreiber博士の功績

47,67,70)。PSI以降に電子のアクセプターが存在するよう〜京都大学・浅田グループとビュルツブルグ大な条件下で、LEF活性に対してO 2の還元活性を比較し学・シュライバーグループの融合研究成果〜た場合には~ 1 0 %程の活性になることが報告されてい葉緑体での活性酸素生成は、過剰な光あるいは低る47,67,70)。このことからO 2還元活性はLEFに相当する

CO 2条件などで光エネルギーが余ったときにO 2へエネ

ような高い光合成電子伝達活性とは言えない。

ルギーが逃げることが原因として認識される。一方

しかしながら、光合成電子伝達反応に与える O 2 ので、生成した活性酸素であるH2O2は、APXによって継効果は非常に大きい。Schreiber、Neubauerらの単離葉続的に消去されなければ、植物はH2O2による酸化障害

緑体を用いた実験を見てみると、 O 2 が十分存在するによって枯死する。この継続的なH2O2消去のためには条件下では白色光照射後、葉緑体から発せられる蛍

A P X の基質である A s c が再生されなければならない

光はNPQの誘導に伴って大きくクエンチングが起こる

が、これは過剰な光エネルギーによってなされる。このに対し、低O 2 条件下ではN P Qはほとんど誘導されのように、光によって生成した活性酸素が光によってず、クロロフィル蛍光のクエンチングはほとんど確認

消去されるという合理的なシステムが活性酸素消去系

されない5)。NPQの大部分はチラコイド膜を介したプとして葉緑体チラコイド膜上に機能していることは、

ロトン勾配（Δp H）に依存的なq Eであることを考慮

90年代終わりに確立された64,65)。一方で、これまで述すると、O 2 依存的な経路はH⁺の取り込みに貢献してべてきたように、PSIでのO 2光還元が光合成電子伝達いることが予想される71)。実際に、単離葉緑体におい反応を誘導し、チラコイド膜ΔpH誘導、そしてNPQ形てΔpHの形成を9-アミノアクリジンのクエンチングや成に不可欠であることを示し、Mehler反応とAPX反応

Electrochromic

shiftにて評価すると、ΔpHの形成は、の光合成における意味を初めて与えたのがビュルツブ

O 2 が存在する条件下で促進されることが確認されてルグ大学のSchreiber博士であった6)。事実、O 2が存在

いる69,72,73)。また、O 2はPSIから電子を奪うことで、すると、あるいは単離葉緑体にH2O2を添加すると、ク

光合成電子伝達鎖上に電子が過剰に蓄積するのを防

ロロフィル蛍光の大幅なクエンチングが確認される

ぐ役割があることも報告されている67,73,74)。

6 ) 。筆者の一人・三宅は、ポスドクでビュルツブルグ

O 2還元により生成するH 2 O 2の消去はAPXにより行大学にて研究していた時、今ではポピュラーになった

わ れ る が 、 そ の 際 に 基 質 と して ア ス コ ル ビ ン 酸

PA Mクロロフィル蛍光解析において、O 2 およびH 2 O 2（ A s c ）が利用され、モノデヒドロアスコルビン酸

が、ドラマティックなクロロフィル蛍光クエンチング（MDA）が生じる64,65)。MDAはPSIにおいて電子のアを誘導するのを目の当たりにして、葉緑体での O 2 /クセプターとして機能でき、MDAの還元によるAscのH2O2代謝の魅力に取りつかれた。

再生は同時に光合成電子伝達反応の促進と H⁺の取り

The Water-Water Cycleという言葉を用いた最初の論込みに貢献する75)。FortiとElliの報告では、単離チラ

文（Schreiberグループとの共著）は幸いにもPlant Cell

コイド膜におけるATP合成活性はO 2のみをPSIの電子

Physiology誌に1998年に掲載していただいた61)。そこのアクセプターとした場合よりもAscを加えたものででは、まさしく、活性酸素消去系にSchreiber博士の概は2倍になることが確認されている 7 6 ) 。このことから念を取り入れており、O 2 のもつ2つの側面を融合した

葉緑体においては、PSIにおいてO 2に電子を伝達する

O 2代謝システムを完成させることができた。論文執筆

ことによって光合成電子伝達活性を向上させるが、さの後半、チラコイド膜上での電子の流れを絵にするとらに発生させたH2O2の消去に携わるAscの再生へも電き、システムの名前を決める議論を浅田先生と熱くし子を伝達することによって、更なる光合成電子伝達活

たことを思い出す。三宅はO 2の魅力に取りつかれてい性の促進を起こしている。

たので「O 2 -O 2サイクル」、浅田先生は「Water-Water
サイクル」の名称を提案された。その後、二人の間で

6. 「浅田先生との研究の思い出」活性酸素消去

多くの議論の後に、電子のオリジナルがPSIIでのH 2 O

系からWWCの確立へ：光合成の老廃物であり、なのでWater-Waterサイクルで行きましょうという浅田

細胞毒として有害で厄介者にすぎなかった O 2

先生の結論に至った。この経緯は、浅田先生と二人の104

光合成研究24 (3) 2014

間でなすことができた深い議論をもつ懐かしい思い出とBaker（2011）では質量分析システム（MS）を利用

であり、そして、Schreiber博士のコンセプトがなかっ

し光合成電子伝達反応における18O2の還元を測定した

たらWWCという言葉は生まれなかったものである。

が、光合成電子伝達反応における O 2 の還元はほとん

私こと三宅が、1993年に、浅田先生から、「ビュルツ

ど無視できる程度であり(< 5%)、ほとんど光合成電子

ブルグへ行き、日本にはいない光合成のO2代謝の専門

伝達反応に寄与しない可能性が報告されている（表家になりなさい」と言われたことを今でも思い出す

1） 79) 。Shiraoらは被子植物と裸子植物それぞれにお（このとき、なぜかしら、誰も行きたがらないので、いてO2の吸収速度を比較し、前者では~1%程、後者は私にその重大な責任が回ってきたのかなぁという雰囲~10%程の活性であることを報告している（表1）80)。

気があった。若い私は、何もわけがわからずその話にいずれの報告においても実際に O 2 の還元は光合成電

調子よく乗ったというのがことの顚末である。しかし

子伝達反応中に起きていることが確認されるが、光ながら、そのおかげで、PAM-Chl fluorometerの作製原

合成電子伝達活性としては非常に小さい。 3 分子の理とその解析、さらに光合成電子伝達系の酸化還元成

AT P合成において要求されるH⁺が1 4個である場合、分の分光学的解析の原理とその手法をSchreiber博士に

LEFに加えてAEFは少なくとも約14%駆動しなくては熱くご教授いただいたことは幸せなことであった。こならないことが予想されるため、WWCのみでATP合の貴重かつ稀有な経験は、これまでの私自身のサイエ

成をサポートしているとは言えない。

ンスの基盤となっている）。

O 2 を利用する光合成電子伝達経路として、P l a s t i d

そして、浅田先生およびSchreiber博士の共通なサイ

terminal oxidase（PTOX）も挙げることが可能である

エンスの柱は、とにかく、誰も見出していない生理現が、PTOXにおける光合成電子伝達活性は0.2 ~ 0.25 s-1

象に出会いなさいということであった。普段の研究にと見積もられているため、 L E F 活性と比較すると

おいて、三宅自身が実験結果を浅田先生に報告に行く

WWCよりも光合成電子伝達における寄与は低いと考と、「この結果は、○○年に × × 先生がすでに見出してえられる（表2）55)。

おり、その結果（新規に提唱されたコンセプト）を支持するだけにすぎず、それを提唱した先生が喜ぶだけ

8. 高等植物の光合成電子伝達反応はO2濃度の影である」というコメントをいただく始末であった。浅響を受ける 〜光合成電子伝達反応におけるO2の田先生のこだわりは、まさしく、新しい生理現象の発役割は?〜見であった。それを、直属の弟子である学生に求めら

前章で生葉におけるWWC活性は非常に低いというれていた。このような経緯、そしてビュルツブルグ大事を述べた。このことは生葉の光合成電子伝達反応学でSchreiber博士のもとで学んだ、O 2 の見事な役割

におけるWWCの貢献度が低いことを意味するが、光（これもまた、Schreiber博士が最初に見出したもので合成電子伝達反応において O 2 は何も影響を与えないある）を目の当たりにして、O2への執着、O2が関わる

わけではない。ClarkeとJohnsonらはCO2濃度1200ppm,

生理現象に出会いを求める三宅自身の研究姿勢はこのO2 21%とCO2濃度1200ppm, O2 2%の条件下において光ときに出来上がった。

合成電子伝達活性を評価したところ、2%O 2 の条件下では21%O2の条件下に比べてPSIIの量子収率が低下することを見出している81)。また、Laiskらは1500ppm

7. WWCはin vivoで機能しているか?
Badgerら（2000）の報告では、高等植物のin vivoにCO2条件下においてO2濃度を21%から2%へと低下させおけるWWCは、全体の光合成電子伝達活性のわずかると、P S Iのアクセプターサイドにおいて光合成電子~ 1 0 % ほどしか機能していないことを報告している

伝達反応の制限がかかり、それと同時にLEF活性が低77)。実際に、Ruuska ら（2000）ではCalvin cycle と光下することを見出している10)。測定時のCO 2濃度が高呼吸に依存した光合成電子伝達活性と、クロロフィル

いことを考慮するとRubiscoにおける光呼吸の影響は蛍光から見積もる全光合成電子伝達活性とが、直線ほとんどないことが考えられる為、PSIIの量子収率に的な関係となり、O 2濃度を変えた環境やRubiscoの含影響を与えているのは、光呼吸以外の O 2 に依存的な量を変えた植物を用いた場合においても、この直線

光合成電子伝達反応であることが示唆される。また関係が維持されることを報告している78)。またDriever

Shiraoら報告を見ると、定常状態の光合成におけるO2

105

光合成研究24 (3) 2014

件下（40 Pa CO2, 1 kPa O2）ではCO 2の固定とJgの開始が確認されるまで約 1 5 分かかることが見出された。またこの報告では、大気条件下においてCO 2固定、Jgが開始する以前から、PSII、PSIにおける光合成電子伝達活性が見出されている。一方で低 O 2 条件
図3 低O2条件下ではAEF活性が抑制され、光合成の開始が遅延する
暗所に順応させたイネ（ノトヒカリ）に励起光（442 µ photon m-2 s-1）を照射した時のJg［ R u b i s c o 依存的電子伝達活性（カルボキシレーション速度＋オキシゲネーション速度）］と光化学系IIにおける量子収率［Y(II)］の変化。測定は37 Pa CO2, 21 kPa O2（黒線）と37 Pa CO2, 1 kPa O2（赤線）の条件下において行った。測定において、励起光は測定開始30秒後に照射した（Miyake et al. 2012より引用）23)。

成電子伝達活性は見出されていない。このことから考えると O 2はRubisco依存的な光合成電子伝達反応が活性化する以前に、
A E F の駆動と光合成の開始をサ

還元活性は低いにも関わらず、飽和光照射時のクロロ

ポートする機能があることが示唆される。

フィル蛍光の減衰速度はO2の有無によって大きく変化

生葉におけるWWC活性がLEF活性に比べると低いこしており、裸子植物においてはクエンチングの半減期とが明らかとなったが、これは同時に光合成電子伝達がO 2の無い条件下において約2倍遅延することが見て反応におけるO 2の影響を無視しても構わないというこ取れる80)。この実験は、暗所に適応させた植物に飽和とと同義ではない（図4）。生理現象としてO 2 の効果

光（~1 s）を照射した場合におけるクロロフィル蛍光が確認されているこの段階において、光合成電子伝達のキネティクスを評価しているため、光合成のシンクであるCalvin

下ではCO2固定、Jg開始前の光合反応がなぜO 2 濃度の変化に応答するのか?という疑問

cycleや光呼吸の影響は無視できると考に関してはまだまだ未知の領域であり、光合成電子伝えられる。つまりこの光合成電子伝達反応において確達反応におけるO2の生理学的役割、O2応答の分子メカ認されるO 2 の影響も、光呼吸以外のO 2 依存的な電子

ニズムの解明は、今後、光合成電子伝達反応の制御メ伝達反応が存在していることを示唆している。

カニズムを把握する上で重要な課題の 1 つであると考またMiyakeらはイネを用いた実験において、低O2条えられる。

件下では光合成の開始が遅延することを報告している

図4 O2が高等植物の光合成に与える影響
高等植物の生葉において観測されるO 2 が光合成に与える影響を取り上げた。ShiraoらはLow
O 2 条件下では、飽和光照射時に誘導されるク
ロロフィル蛍光の消光が大気条件下に比べて遅延することを見出している。黒線が大気条
件下のクロロフィル蛍光を示し、赤線がL o w
O 2 下のクロロフィル蛍光のキネティクスを示す（Shirao et al. 2013）80)。
Laiskらは高CO 2条件下においてO 2濃度を低下させるとP700の還元レベルが上昇し、それに伴う C O 2 固定速度の低下を見出している（Laisk et al. 2007）10)。
ClarkeとJohnsonは高CO2条件下でO2濃度を低下させるとPSIIにおける量子収率が低下することを見出している（Clarke & Johnson 2001）81) 。
Miyakeらは低O 2条件下ではPSIIにおける量子収率の低下、ならびに光合成の誘導が遅れることを見出している（Miyake et al. 2012）23)。黒線が37 Pa CO , 21 kPa O 条件下のCO222
固定速度を示し、赤線が37 Pa CO2, 1 kPa O2条
件下のCO2固定速度のキネティクスを示す。

（図3） 2 3 ) 。この報告では暗所に順応させた葉に赤色光を照射すると、大気条件下（40 Pa CO2, 21 kPa O2）
では約7分後にCO 2固定、並びにRubisco依存的な光合成電子伝達反応（Jg）の開始が確認されるが、低O2条

106

光合成研究Vitamin K as a cofactor of photosynthetic
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葉緑体においてRubisco非依存的な光合成電子伝達
反応の「存在」に関しては生理学的現象をもとにした報告を中心に、徐々に確立されたものになりつつある。しかしながら、その制御メカニズム、生理学的
役割、分子メカニズムはほとんど明らかとなっていな
いといってよい。今後は野生型植物において確認される各種AEF活性を説明しうる植物内のコンポーネントの探索が重要になると考えられる。一方で、光合成電子伝達反応の制御を明らかとする上でATP、NADPHの合成と消費のバランス、並びにATP/e-に対する考察も非常に重要である。ATPに関しては前述のように高等植物の葉緑体におけるATPaseが3分子のATPを生成するのに必要なH⁺の数は未だ決定されていない。ATPの合成にATPaseが要求するH⁺の数は、AEFが追加的
な H ⁺の取り込みをどの程度担うのかどうかに直接関わる要因である。それと同時にATPaseは代謝による[ATP]/[ADP][Pi]比の変化に応答して、ルーメン側からの H⁺の放出を調整し、光合成電子伝達反応におけるqEの制御に大きく関係する82-84)。これらの報告から光合成電子伝達反応の制御は、 H⁺の取り込みと放出の両方のバランスを考慮しなくてはならない。
NADPHの酸化還元のバランスも光合成電子伝達反応に大きく関与する21)。NADPHの消費が抑制されると葉緑体内部の代謝におけるATP/NADPHのバランスを崩すこととなり、同時にATPの消費の抑制を誘導する85)。これらの報告から、今後は光合成電子伝達反応の制御を代謝との関連を密にして考察していく必要があると考えられる。

謝辞
今回の総説の執筆の機会を頂きました東京大学大学院

24 (3) 2014野口航准教授に厚く御礼申し上げます。

Received November 16, 2014, Accepted December 3, 2014,
Published December 31, 2014

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光合成研究indirect evidence for a regulatory role of superoxide
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acid
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electrontransport. Biochim. Biophys. Acta, Bioenerg. 1183,
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plants and algae: rates and control of direct
photoreduction (Mehler reaction) and rubisco
oxygenase. Phil. Trans. R. Soc. B. 355, 1433-1446.
78. Ruuska, S.A., Badger, M.R., Andrews, T.J. and Von
Caemmerer, S. (2000) Photosynthetic electron sinks intransgenic tobacco with reduced amounts of Rubisco:little evidence for significant Mehler reaction. J. Exp.
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79. Driever, S.M. and Baker, N.R. (2011) The water–water
cycle in leaves is not a major alternative electron sinkfor dissipation of excess excitation energy when CO2
assimilation is restricted. Plant Cell Environ. 34,
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80. Shirao, M., Kuroki, S., Kaneko, K., Kinjo, Y.,
Tsuyama, M., Förster, B., Takahashi, S. and Badger,
M.R. (2013) Gymnosperms have increased capacity for

24 (3) 2014

electron leakage to oxygen (Mehler and PTOX
reactions) in photosynthesis compared with
angiosperms. Plant Cell Physiol. 54, 1152-1163.
81. Clarke, J.E., and Johnson, G.N. (2001) In vivo
temperature dependence of cyclic and pseudocyclic
electron transport in barley. Planta 212, 808-816.
82. Kanazawa, A. and Kramer, D.M. (2002) In vivo
modulation of nonphotochemical exciton quenching(NPQ) by regulation of the chloroplast ATP
synthase. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 99, 12789-12794.
83. Takizawa, K., Kanazawa, A. and Kramer, D.M. (2008)
Depletion of stromal Pi induces high ‘energy‐
dependent’ antenna exciton quenching (qE) by
decreasing proton conductivity at CFO‐CF1 ATPsynthase. Plant Cell Environ. 31, 235-243.
84. Kohzuma, K., Dal Bosco, C., Kanazawa, A., Dhingra,
A., Nitschke, W., Meurer, J. and Kramer, D.M. (2012)
Thioredoxin-insensitive plastid ATP synthase that
performs moonlighting functions. Proc. Natl. Acad.
Sci. USA. 109, 3293-3298.
85. Livingston, A.K., Kanazawa, A., Cruz, J.A. and Kramer,
D.M. (2010) Regulation of cyclic electron flow in C3
plants: differential effects of limiting photosynthesis at
ribulose‐1, 5‐bisphosphate carboxylase/oxygenase andglyceraldehyde‐3‐phosphate dehydrogenase. Plant Cell
Environ. 33, 1779-1788.

The evaluation of alternative electron flow (AEF) activity based on the kinetic parameters,
and the physiological role of O2-dependent AEF in plants

Daisuke Takagi, Chikahiro Miyake*

Graduate School of Agricultural Science, Kobe University110

光合成研究24 (3) 2014

報告記事
若手の会活動報告〜サイエンスアゴラ2014への出展〜
立命館大学 生命科学部 生命情報学科
浅井 智広

例年通りであれば、秋は若手の会では予定している活動が最も多い時期です。メーリングリストでもご案内させていただいた通り、今年は秋に開催していた合宿形式セミナーを12月初旬の冬開催に変更しました。この変更
により今秋の若手の会の活動は、ここ数年で若手の会の主要な活動のひとつになった「サイエンスアゴラ」への出展に絞りました。サイエンスアゴラは日本科学技術振興機構（JST）が主催する、一般向けの大規模な科学コ
ミュニケーションイベントです。今年は「あなたと創るこれからの科学と社会」をテーマに11月7日から9日までの三日間の予定で開催されました。
若手の会では、若手研究者のアウトリーチ能力の向上を目指して、出展者側としてサイエンスアゴラに参加しています。2011年から毎年出展しており、今回で通算4回目となりました。今回は『一緒に考えよう！「光合成でつくる未来」』と題した出展企画が採択されました。イベント初日である11月7日は主催者側が選ぶ限られた企画のみが出展されることになっていましたが、私たちの出展企画はこれに選ばれ、最も人通りの多い日本科学未来館のブースで三日間出展することができました。周りは大学や国立の研究所などのアウトリーチ活動への支援が充実した機関が多数出展していましたが、私たちのブースもそれらに負けないほどの集客があり、終始盛況な出展となりました。詳しい活動内容は、後の報告記事をご覧ください。
若手の会では、実年齢や身分、所属を問わず、多くの研究者の方々の積極的な参加を歓迎します。現場の研究を推進している研究者が若い気持ちで交流することは、学際性の強い光合成研究では絶対不可欠であると思います。興味を持たれた方は、お気軽にご参加ください。また、この記事を読んでいただいた先生方には、ご自身の参加はもちろんのこと、ご指導されている学生さんやポスドクの方に若手の会への参加をお勧めいただければ幸いです。ご不明な点などがあれば、遠慮無く浅井（cazai@fc.ritsumei.ac.jp）までご連絡ください。皆さんのご参加をお待ちしています。

111

光合成研究24 (3) 2014

報告記事

サイエンスアゴラ2014 “一緒に考えよう！「光合成でつくる未来」” 出展報告
1筑波大学 生命環境系
2大阪市立大学 複合先端研究機構
3東京大学 大学院理学系研究科
4立命館大学 生命科学部

1辻 敬典

サイエンスアゴラとは

2川上 恵典3溝上 祐介4浅井 智広ことを重視しました。主催者であるJST側も研究者にサイエンスアゴラは、科学技術振興機構（JST）がよる情報発信を重視しており、今年のサブテーマの一主催する「科学と社会をつなぐ広場をつくる」ことつとして「科学はどこまで進歩しているのか？」といを目指して始まった交流イベントです。具体的には、うテーマが設定されていました。このように、JSTの研究者やサイエンスコミュニケーターが科学に関する求める方針と我々の方針が一致したことも、特別出展示や講演を行うことで、来場者や他の出展者と交展日に呼ばれた理由のひとつだと考えられます。

流を深めます。若手の会としては、サイエンスアゴラ
をアウトリーチ活動のノウハウを養う場として位置付

出展の概要

けて2011年から参加しており、今年で4回目の出展と今年も昨年の出展を踏襲しつつ、新しい試みをいくなりました。例年のサイエンスアゴラは2日間の開催

つか始めました。デモ実験では昨年と同様に、小型でしたが、今年は1 1月7日（金）から9日（日）までのスペクトル測定装置を用い、光合成色素がどのようの3日間開催となり、7日（金）はJST関係者やプレス

な色を吸収するのかということを分かりやすく解説

を主な対象とした特別出展日でした。幸いなことしました。これと合わせて、薄層クロマトグラフィーに、我々若手の会は主催者である J S T から依頼があ（TLC）による光合成色素の展開の実験も行い、クロり、特別出展日である7日にも出展することができま

ロフィルを始めとする光合成色素の機能や、光の吸収した。若手の会は、 2 0 1 2 にアゴラ賞を受賞するなのしくみについて解説しました。これらのデモ実験

ど、過去のアゴラ出展で高い評価を受けています。そは、抽出したクロロフィルやTLCで展開された光合成のような過去の活動も評価されて7日の特別出展日に色素など、光合成生物が持つ美しい色が来場者の興も呼ばれたのだと思います。

味を引くためか、多くの人が足を止めて見てくれました。見て「美しい」と思うだけではなく、クロロ

今年の出展の方針

フィルが吸収する色を、スペクトル測定装置のデータ

今年のサイエンスアゴラでは、「あなたと創るこれを見てもらうことで、光の吸収プロセスについて理解

からの科学と社会」という全体テーマが掲げられまを深めてもらいました。また、光合成生物の多様性した。科学と社会を関連付けるには、応用研究を語ることが最も簡単です。しかし、今回の私たちの出展
では、一般の方々に光合成についての基礎知識や最先端の研究を知ってもらうことを第一の目標とし、その上で応用研究についても紹介するという出展内容にしました。研究者が社会の要請に答えることは重要ですが、科学的なリテラシーが欠如した状態の社会の要請で科学研究の方向性が決まってしまうことは危険です。そのため研究者である我々が、光合成に関する知識と光合成研究の最先端を社会に知ってもらう112

光合成研究を知ってもらうために、様々な光合成生物の培養展示

24 (3) 2014

反省と今後の展望と顕微鏡観察を行いましたが、これも昨年と同様に

アンケートの結果によると、昨年と同様に老若男盛況でした。目に見えない藻類を実際に見てもら

女問わず幅広い層の来場者が訪れてくれました。アン

い、陸上植物だけではなく、様々な生物が光合成してケートの「勉強になったか」という問いに対しては、いることを実感してもらえたと思います。

回答者の3 / 4以上が「とてもそう思う」と回答してお展示での新たな取り組みとしては、光化学系IIおより、単に「楽しい」「おもしろい」出展ではなく、びIやRubiscoなど、光合成で重要な役割を果たすタン

光合成や我々の研究に関して知識を深めてもらうこと

パク質の立体模型を3 Dプリンターで作製し、展示しができたと思います。当初から目指してきた「アウトました。3 D模型については、来場者はもちろんのこリーチ活動のノウハウを養う」という目標に関してと、出展者である若手の会のメンバーや別ブースの研も、過去4年間の出展経験が個々のアウトリーチ活動

究者の方が興味津々で、Rubiscoの模型を手に取り反へとフィードバックされつつあります。実際に、出展

応中心はどこであるかなど、様々な議論が起こりま者の一人は、自身の大学でのアウトリーチ活動にアした。立体構造については教科書よりも3 D模型の方ゴラで行った実験（カラムクロマトグラフィーによるが圧倒的に理解しやすく、サイエンスアゴラのような色素の分析）を取り入れました。今回のアゴラにおアウトリーチの場だけではなく、大学での授業など

いても、出展メンバーの間でデモ実験のコツや生物材

様々な場で使えると実感しました。また、今年は光料の入手法に関して情報交換が行われ、着実にアウト合成のしくみについて解説したパネル（ 2 枚）に加え、人工光合成やバイオ燃料生産などの応用研究に焦点をあてたパネルを新たに1枚加えました。バイオ
燃料生産や人工光合成については、たくさんの方が興味を持っており非常に多くの質問をもらいました。光合成の産業利用については、実用化へのハードルは高いものの、化石燃料への依存から脱却するための重要な研究であることを解説しました。
もう一つの新たな試みとして、統一感を出すためにオリジナルデザインのユニフォーム T - シャツを作製し、それを着て出展を行いました。出展者が同じユニフォームを着ることで、来場者が容易に出展者を判別でき、声をかけやすくなるというメリットがあります。T-シャツのデザインは、前面に葉緑体のイラ
ストが、背面にはPSII酸素発生中心の「歪んだ椅子」に地球が乗っているイラストがプリントされています。背面のイラストは、地球上の生物が酸素発生型光合成に依存していることを意図したものです。このオ
リジナルT-シャツにはまだ在庫があるため、欲しい方は浅井（cazai@fc.ritsumei.ac.jp）までご一報ください。

113

光合成研究24 (3) 2014

リーチのノウハウが養われていることを実感しましそ意義があります。今後もその点を意識し、研究者とた。

して良い研究を行い、それをアゴラなどのイベントを一方、反省点としては、サイエンスアゴラに出展す

通して社会に発信していくことを目指していきたいとることを若手の会の皆さんへ周知することが遅れてし思います。

まい、出展者として参加する方が限られてしまったことが挙げられます。私たちは、アゴラをアウトリーチ
活動の試行錯誤の場であるととらえているので、来年のアゴラはメーリングリストやSNSを使って学生や若謝辞

手研究者に広く声を呼びかけ、多くの人のアイデアをもとに新たな展示や実験に挑戦していきたいと考えて

今回の出展にあたり、多くの方々にご協力していただいます。

きました。この場を借りて厚く御礼申し上げます。

来場者アンケートによると、私たちの出展に期待することとして、回答者の約30%が「最新の研究につ

国立環境研究所

志村遥平博士（珪藻アートプレパ

いて知る」という項目を、約20%が「研究者の人と話

ラートの提供）す」という項目を選択していました。研究者が最新の

静岡大学

成川礼講師（事前準備、当日の運営）

研究を紹介するというスタンスは我々も重視してお東京大学

榎本元、前田海成、吉野宏明、渡辺麻衣

り、あくまで研究者の集団としてのアウトリーチ活動

博士（事前準備、当日の運営）を行っていくつもりです。時間やお金をより多くつぎ

東京工業大学

込めばよりよい出展になることは間違いないのですの運営）が、そのために自分自身の研究がおろそかになって

基礎生物学研究所

は元も子もありません。普段から研究に携わってい浅井歩（ユニフォームTシャツのデザイン）

清水隆之（光合成細菌の提供、当日
大西紀和博士（当日の運営）
以上、敬称略る研究者自らが、自分の研究について語ることにこ114

光合成研究24 (3) 2014

事務局からのお知らせ
2014年5月31日総会において報告しました会員数の動向および承認を受けました2013年度決算と2014年度予算です。
1. 会員数動向
2013年12月末日の会員数	

個人会員
賛助会員
計

	

入退会者数

	

363(360)7	
 (7)370(367)

入会( )内は2012年12月末の会員数

退会

個人会員
賛助会委員
計
個人会員
賛助会委員
計

2. 2013年度決算報告
収入の部
会費収入
年会黒字分
計

予算
900,0000
900,000

決算
808,500
168,636
977,136差異-91,500
168,636
77,136

予算
600,000
110,000
30,0000
10,00010,00030,0005,000
0795,000

決算
974,756
103,550
30,00025,57010,0008,900
27,0004,977
01,184,753

差異-374,756
6,450
0-25,570
0
1,100
3,000
23
0
-389,752

予算

決算

差額

支出の部
会報印刷費
通信運搬費
若手の会補助金
サイエンスアゴラ出展補助
学協会費
振り込み手数料
その他印刷費
雑費
年会シンポジウム準備金
計

第4回年会シンポジウム収支決算
年会シンポジウム準備金
シンポジウム出展料
年会参加費
懇親会会費
収入合計
シンポジウム要旨集
ポスター賞副賞
会場使用料
ポスターパネル使用料
雑費
懇親会支出
一般会計へ戻入
支出合計
収支	

0
200,000
170,000
240,000
610,000

2013年日本光合成学会収支決算
収入の部 合計
支出の部 合計差額（次年度繰り越し金）

977,136
1,184,753-207,617115

0
200,000
232,000
289,000
721,000
0
15,000
256,020026,344
255,000
168,636
721,000
00
062,00049,000110,000

41
1
42
38
1
39

光合成研究24 (3) 2014

3. 2014年度収支予算
収入の部
会費収入
シンポジウム出展料
年会参加費
懇親会費
収入合計

本年度予算
810,000
350,000
160,000
240,000
1,560,000

前年度決算
808,500
200,000
232,000
289,000
1,529,500

差異

本年度予算
700,000
110,000
30,00010,0000
10,00030,00057,100190,730
40,0000273,000
240,000
5,000
1,695,830

前年度決算
974,756
103,550
30,00010,00025,5708,900
27,0000041,344
256,0200
255,000
4,977
1,737,117差異-274,756
6,450
00-25,570
1,100
3,000
57,100190,730-1,344-256,020
273,000-15,000
23-41,2871,500
150,000-72,000-49,000
30,500

支出の部
会報印刷費
通信運搬費
若手の会補助金
学協会費
サイエンスアゴラ出展料
振り込み手数料
その他印刷費シンポジウム要旨集
光合成事典PDF化
ポスター賞副賞他
会場使用料
ポスターパネル使用料
懇親会支出
雑費
支出合計

2014年日本光合成学会予算収支
収入の部
支出の部
差額（次年度繰り越し金）

1,560,000
1,695,830-135,830★入会案内
本会へ入会を希望される方は、会費（個人会員年会費：￥1,500、賛助法人会員年会費：￥50,000）
を郵便振替（加入者名：日本光合成学会、口座番号：00140-3-730290）あるいは銀行振込（ゆうちょ銀行、０１９店(ゼロイチキュウと入力)、当座、0730290

名前：ニホンコウゴウセイガッカイ）にて送金の上、次ページの申し込み用紙、または電子メールにて、氏名、所属、住所、電話番号、ファッ
クス番号、電子メールアドレス、入会希望年を事務局までお知らせください。
★会費納入のお願い
学会の運営は、皆様に納めていただいております年会費によりまかなわれております。当該年度の会費が未納の場合、光合成研究が送られてくる封筒に、会費未納が印字されています。ご都合のつくときに、会費を納入ください。１年間会費を滞納された場合、次年度よりお名前が会員名簿から削除
され、光合成研究は届かなくなります。再入会される場合は、未納の分もあわせてお支払いいただきます。会費納入状況などにつきましては、ご遠慮なく事務局（shikanai@pmg.bot.kyoto-u.ac.jp）までお問い合わせください。会員の皆様のご理解とご協力をお願い申し上げます。

116

光合成研究24 (3) 2014

日本光合成学会会員入会申込書

平成日本光合成学会御中
私は日本光合成学会の趣旨に賛同し、平成

年

月

日

年より会員として入会を申し込みます。

[ ]内に会員名簿上での公開承諾項目に○印をつけてください[ ] 氏名（漢字）（必須）
氏名（ひらがな）
氏名（ローマ字）[ ] 所属[ ] 住所1〒[] 住所2（自宅の方または会誌送付先が所属と異なる場合にのみ記入）
〒

[
[
[
[

] TEL1] TEL2 (必要な方のみ記入）] FAX] E-mail

個人会員年会費	

	

 1,500円	

 (会誌、研究会、ワークショップなどの案内を含む）
賛助法人会員年会費		

 50,000円	

 (上記と会誌への広告料を含む）（振込予定日：平成年月日）（会員資格は１月１日〜１２月３１日を単位とします）＊複数年分の会費を先払いで振り込むことも可能です。その場合、通信欄に（何年度〜何年度分）とお書き下さい。
連絡先〒060-0819

札幌市北区北19条西8丁目

北海道大学

低温科学研究所

生物適応機構学（田中歩）研究室内
日本光合成学会
TEL:011-706-5493 / FAX:011-706-5493
ホームページ: http://photosyn.jp

郵便振替口座銀行振込の場合

加入者名：日本光合成学会

口座番号：00140-3-730290

ゆうちょ銀行、０１９店(ゼロイチキュウと入力)、当座、0730290
名前：ニホンコウゴウセイガッカイ

117光合成研究24 (3) 2014

日本光合成学会会則
第１条

名称

本会は日本光合成学会（The Japanese Society of Photosynthesis Research）と称する。
第２条

目的

本会は光合成の基礎および応用分野の研究発展を促進し、研究者相互の交流を深めることを目的とす
る。
第３条

事業

本会は前条の目的を達成するために、シンポジウム開催などの事業を行う。
第４条

会員

１．定義
本会の目的に賛同する個人は、登録手続を経て会員になることができる。また、団体、機関は、賛助会員になることができる。
２．権利会員および賛助会員は、本会の通信および刊行物の配布を受けること、本会の主催する行事に参加することができる。会員は、会長を選挙すること、役員に選出されることができる。
３．会費
会員および賛助会員は本会の定めた年会費を納めなければならない。
第５条

組織および運営

１．役員
本会の運営のため、役員として会長１名、事務局長１名、会計監査１名、常任幹事若干名をおく。役
員の任期は２年とする。会長、常任幹事は連続して二期を越えて再任されない。事務局長は五期を越えて再任されない。会計監査は再任されない。
２．幹事
幹事数名をおく。幹事の任期は４年とする。幹事の再任は妨げない。
３．常任幹事会
常任幹事会は会長と常任幹事から構成され、会長がこれを招集し議長となる。常任幹事会は本会の運営に係わる事項を審議し、これを幹事会に提案する。事務局長と会計監査は、オブザーバーとして常任幹事会に出席することができる。
４．幹事会
幹事会は役員と幹事から構成され、会長がこれを招集し議長となる。幹事会は、常任幹事会が提案した本会の運営に係わる事項等を審議し、これを決定する。
５．事務局
事務局をおき、事務局長がこれを運営する。事務局は、本会の会計事務および名簿管理を行う。
６．役員および幹事の選出
会長は会員の直接選挙により会員から選出される。事務局長、会計監査、常任幹事は会長が幹事の中から指名し、委嘱する。幹事は常任幹事会によって推薦され、幹事会で決定される。会員は幹事を常任幹事会に推薦することができる。

118

光合成研究第６条

24 (3) 2014

総会

１．総会は会長が招集し、出席会員をもって構成する。議長は出席会員から選出される。
２．幹事会は総会において次の事項を報告する。
１）前回の総会以後に幹事会で議決した事項
２）前年度の事業経過
３）当年度および来年度の事業計画
３．幹事会は総会において次の事項を報告あるいは提案し、承認を受ける。
１）会計に係わる事項
２）会則の変更
３）その他の重要事項
第７条

会計

本会の会計年度は１月１日から１２月３１日までとする。当該年度の経理状況は、総会に報告され、その承認を受ける。経理は、会計監査によって監査される。本会の経費は、会費および寄付金によ
る。

付則
第１

年会費は個人会員1,500円、賛助会員一口50,000円とする。

第２

本会則は、平成１４年６月１日から施行する。

第３

本会則施行後第一期の会長、事務局長、常任幹事にはそれぞれ、第５条に定める規定にかかわらず、平成１４年５月３１日現在の会長、事務局担当幹事、幹事が再任する。本会則施行後第一期の役員および幹事の任期は、平成１４年１２月３１日までとする。
第４

本会則の改正を平成２１年６月１日から施行する。

日本光合成学会の運営に関する申し合わせ
1. 幹事会：
幹事は光合成及びその関連分野の研究を行うグループの主催者である等、日本の光合成研究の発展に顕著な貢献をしている研究者とする。任期は4年とするが、原則として再任されるものとする。
2. 事務局：
事務局長の任期は2年とするが、本会の運営を円滑に行うため、約5期（10年）を目途に再任されることが望ましい。
3. 次期会長：
会長の引き継ぎを円滑に行うため、次期会長の選挙は任期の1年前に行う。
4. 常任幹事会：
常任幹事会の運営を円滑におこなうため、次期会長は常任幹事となる。

119

光合成研究24 (3) 2014

編集後記
今号は、2014年5月31日の光合成学会公開シンポジウム「活性酸素研究の歩み」でご講演していただいた方に、「浅田浩二先生を偲んで」という特集に執筆していただきました。浅田先生の思い出も含めて執筆していただきましたが、いかがだったでしょうか。浅田先生が行ってこられた研究がさま
ざまな分野で発展していることに、あらためて驚きを感じました。今号に対するご意見や本誌に対するご要望がございましたら、knoguchi@bs.s.u-tokyo.ac. jpまで是非お知らせください。
次号から、私から埼玉大学の西山佳孝さんに編集長が交替いたします。2年間6号分という短い間でしたが、大変お世話になりました。執筆していただいた方々、編集委員の方々、田中歩会長、 鹿内利治事務局長をはじめ常任幹事の方々には、大変お世話になりました。敬称を略させていただきますが、特集を組んでいただいた方々、伊藤昭彦、遠藤剛、佐藤直樹、鹿内利治、田中歩、寺島一郎、西山佳孝、お忙しいなか査読をしてくださった方々、明石欣也、小山耕平、坂本亘、鹿内利治、園池公
毅、田副雄士、壇浦正子、橋本昌司、蜂谷卓士、原田二朗、平田竜一、三宅親弘、村上明男、吉田啓亮、和田元、本当にありがとうございました。
＜東京大学

野口 航＞

記事募集
日本光合成学会では、会誌に掲載する記事を会員の皆様より募集しています。募集する記事の項目は以下の通りです。
○ トピックス：光合成及び関連分野での纏まりのよいトピックス的な記事。
○ 解説：光合成に関連するテーマでの解説記事。
○ 研究紹介：最近の研究結果の紹介。特に、若手、博士研究員の方からの投稿を期待しています。
○ 集会案内：研究会、セミナー等の案内。
○ 求人：博士研究員、専門技術員等の募集記事。
○ 新刊図書：光合成関係、または会員が執筆・編集した新刊図書の紹介。書評も歓迎します。
記事の掲載を希望される方は、会誌編集長、野口（knoguchi@bs.s.u-tokyo.ac.jp）までご連絡く
ださい。

121

光合成研究 23 (1) 2013

「光合成研究」編集委員会
編集長!

野口 航（東京大学）

編集委員 !

西山 佳孝（埼玉大学）

編集委員 !

園池 公毅（早稲田大学）

編集委員 !

田中 亮一（北海道大学）

日本光合成学会 2013-2014年役員
会長!

!

田中 歩（北海道大学）

事務局長!!

鹿内 利治（京都大学）

常任幹事!!

池内 昌彦（東京大学）!

!

前会長

常任幹事!!

野口 航（東京大学）!

!

編集長

常任幹事!!

西山 佳孝（埼玉大学）!

!

編集委員

常任幹事!!

園池 公毅（早稲田大学）!

!

編集委員

常任幹事!!

久堀 徹（東京工業大学）!

!

渉外

常任幹事!!

太田 啓之（東京工業大学）! !

渉外

常任幹事!!

皆川 純（基礎生物学研究所）!

光生物協会

常任幹事!!

日原 由香子（埼玉大学）!

!

年会

2013年

常任幹事!!

熊崎 茂一（京都大学）!

!

年会

2014年

会計監査!!

大岡 宏造（大阪大学）

編集委員!!

田中 亮一（北海道大学）

ホームページ!

高林 厚史（北海道大学）

第24巻

第3号

（通巻71号）

光合成研究

日

本

光

合

成

学

2014年12月31日発行

会〒060-0819 札幌市北区北19条西8丁目
北海道大学低温科学研究所
生物適応研究室内
TEL & FAX : 011-706-5493
e-mail : jspr@photosyn.jp
ホームページ : http://photosyn.jp/

郵便振替口座銀行振込の場合

加入者名：日本光合成学会

口座番号：00140-3-730290

ゆうちょ銀行、０１９店(ゼロイチキュウと入力)、当座、0730290
名前：ニホンコウゴウセイガッカイ

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