JAPAN F I S H E RI E S R ES OURC E C O NSE RVATIO N ASSO CI ATIO N
ISSN 1882-8574

公益社団法人

C

O

N

T

E

年頭のご挨拶
燈

火

N

T

季報

S

公益社団法人日本水産資源保護協会会長 髙橋 正征

魚はなぜ性転換できるのか？
る性転換のメカニズム………… 3細胞と分子から見愛媛大学南予水産研究センター

准教授

2016年

太田 耕平 ……… 8

さけ・ます類の病原細菌およびウイルスの卵を介した垂直感染防止法
北海道大学大学院水産科学研究院◆会議の報告等 ………………………………………… 4
水産防疫対策事業

冬 通巻546

第8巻

第4号

招聘教員 吉水 守 …… 15

水産資源保護啓発研究事業◆お知らせ ………………………………………………… 22

平成27年度魚類防疫士の認定

平成27年度養殖衛生管理技術者養成特別コース研修「新しい水産防疫対象疾病の検査法等について」 …………………………………… 2
国産水産物流促進センター

国産水産物の利用促進に関するセミナー …………………………………………………………………… 23

マリン・エコラベルジャパン

株式会社オホーツク活魚 ………………………………………………………………………………………………… 24

平成27年11月26日、石垣記念ホール（東京赤坂）にて、99回目となる水産功績者表彰が行われました。本年度は35名の方々が受賞され、当協会の国産水産物流通促進事業，マリン・エコラベル認証事業にご尽力頂いている篠原英一郎氏もその一人として表彰を受けられました。（写真右、右側）

年頭のご挨拶

公益社団法人会

日本水産資源保護協会
長

髙

橋

正

征

新年あけましておめでとうございます。
昨今の海水温の上昇の影響などもあって、サンマやスルメイカなどが回遊する海域や時期が変わり、漁獲場所や漁獲量が大きく変動しています。天然資源に依存している水産業にとって、こうしたさまざまな日常的な変動は他人ごとではありません。関係者の生活に直結するので、常に問題解決のための最大の努力が必要です。
一方、長期的な課題への対処も重要です。世界の漁獲量は 1995 年頃をピークに、その後は漸減しています。これは漁獲量が海の生産性の限界に近づいているためで、自然に依存している以上、避けられません。漁獲量の減少を補うかたちで養殖生産が増え、今では養殖生産量が漁獲量を追い越しつつあります。その結果、世界の漁獲量と養殖生産量を合わせた魚介類生産量は増加が続いています。こうした背景には、世界の魚介類消費量の増加があります。1950 年から現在までの 60 数年間で、世界の魚介類消費量は 7倍に増え、現在も増加は続いています。
翻って、日本をみると、状況は世界の傾向と全く違います。国内の漁獲量は 1988 年から 2014 年の 26 年間で半減し、その間、漁獲量の 1/3 しかない養殖生産量も漸減しています。魚介類の国内生産の減少を補うかたちで輸入量が増えましたが、それも 1990 年
代までで、2000 年以降は漸減しています。その結果、国内の総魚介類供給量は 30 年弱で半減してしまいました。これは、その間に国民の魚介類消費量が半減してしまったことを意味しています。
漁獲、養殖、水産物加工など水産に関係した産業、並びにそれを支える学問・研究などで、日本はかつて世界をリードしていましたが、今では世界から取り残されつつあります。こうした日本の事情は、水産に関係している当協会の会員の皆さんも実感され始めているに違いありません。
かかる状況を踏まえ、当協会では国産水産物流通促進事業など従来にない切り口の事
業にも取り組んでいます。
当協会は、短期的な問題と同時に、長期的な課題も視野に入れ、できるところから取り組んでいきたいと考えています。是非、会員各位の積極的なご意見、ご提案をお寄せいただきたく、年頭に際し、心からお願い申し上げます。
3

平成 28 年冬号

水産防疫対策事業
平成 27 年度養殖衛生管理技術者養成

し、技術者の育成を図ることを目的としています。

本科専門

コース研修

日時：平成 27 年 12 月 8 日（火）～ 12 月 16 日（水）目的：地方公共団体等が推薦する者に対し、養殖衛

場所：公益社団法人日本水産資源保護協会 3F 研修

生管理技術者として必要な知識、技術の講義を実施

室

科目および講師：
科

目

時間

氏

名

所

属

魚類薬理学

6

大嶋

雄治

国立大学法人九州大学大学院農学研究院

魚類飼養学

6

佐藤

秀一

国立大学法人東京海洋大学海洋科学部

魚類生理学

6

大久保

魚類病理学

6

三輪

理

国立研究開発法人水産総合研究センター増養殖研究所
魚病診断・研修センター

魚類免疫学

6

中西

照幸

日本大学生物資源科学部

4

公益社団法人日本水産資源保護協会

2

良永

知義

国立大学法人東京大学大学院農学生命科学研究科

2

吉水

守

国立大学法人北海道大学大学院水産科学研究院

2

水野

芳嗣

媛すい有限責任事業組合

水産防疫の取り組みに関す
I
る意見交換
養殖衛生
管理問題 II 外国からの疾病の侵入とそ
の問題点
に関する
特論・
III 魚病の見方～経験を基に～演習
養殖現場における魚病診断・
IV
対策
合計時間数

範聡

国立大学法人東京大学大学院農学生命科学研究科

40
（敬称略）
時間割：
時

限

1

2

3

4

5

6

10:00 ～
11:00 ～
13:00 ～
14:00 ～
15:15 ～
16:15 ～
日 時
11:00
12:00
14:00
15:00
16:15
17:15
魚類薬理学
魚類薬理学
12 月 8 日（火）特論・演習 I
（大嶋）
（大嶋）
魚類病理学
魚類薬理学
特論・演習 I
9 日（水）
（三輪）
（大嶋）
魚類病理学
魚類病理学
10 日（木）（三輪）（三輪）
特論・演習 II
特論・演習 III
特論・演習 IV
11 日（金）
（良永）
（吉水）
（水野）
魚類飼養学
魚類飼養学
魚類飼養学
14 日（月）
（佐藤）
（佐藤）
（佐藤）
魚類生理学
魚類生理学
魚類生理学
15 日（火）
（大久保）
（大久保）
（大久保）
魚類免疫学
魚類免疫学
魚類免疫学
16 日（水）
（中西）
（中西）
（中西）
（敬称略）

日本水産資源保護協会◆季報

4

受講者：
都道府県等

氏

名

属

静

宮城県

石川

哲郎

宮城県水産技術センター気仙沼水産試験場

山形県

野口

大悟

山形県水産試験場

新関晃司

福島県内水面水産試験場

渋谷武久

福島県水産試験場

栃木県

酒井

忠幸

栃木県水産試験場

千葉県

早川

美恵

千葉県水産総合研究センター

東京都

飯島

純一

東京都島しょ農林水産総合センター大島事業所

山梨県

谷沢

弘将

山梨県水産技術センター

長野県

新海

孝昌

長野県水産試験場

岐阜県

藤井

亮吏

岐阜県水産研究所下呂支所

静岡県

木南

竜平

静岡県水産技術研究所富士養鱒場

三重県

中村

砂帆子

三重県水産研究所尾鷲水産研究室

島根県

吉田

太輔

島根県水産技術センター

山口県

谷村

誠児

公益社団法人山口県光・熊毛地区栽培漁業協会 光・熊毛地区栽培漁業センター

愛媛県

原川

翔伍

愛媛県農林水産研究所水産研究センター

草原陽香

長崎県五島振興局農林水産部水産課上五島水産業普及指導センター

築山陽介

長崎県長崎振興局管理部県央水産業普及指導センター

宮崎県

宮本

一隆

宮崎県水産試験場

水産総合
研究センター

竹島利

国立研究開発法人水産総合研究センター瀬戸内海区水産研究所

福島県

長崎県

一徳

所

青森県

地方独立行政法人青森県産業技術センター内水面研究所（敬称略）

平成 27 年度養殖衛生管理技術者養成

ンプルの採取方法等を学び、現場において円滑に業

特別コース

研修

務が実施できるよう動物検疫所職員の育成を目的と目的：水産防疫対策の見直しに伴い輸入防疫対象疾しています。

病があらたに追加され、対象の動物種も大幅に拡大

日時：平成 27 年 12 月 21 日（月）～ 12 月 22 日（火）されました。本研修では、あらたに追加された疾病

場所：公益社団法人日本水産資源保護協会 3F 研修

および動物種についての解説と検査のポイントやサ

室

題目および講師：氏

名

魚類の疾病と検査用サンプル採取について

題

目

三輪

理

貝類の観察と検査用サンプル採取について桐生

郁也

エビ類の疾病と検査用サンプル採取について

米加田

防疫対象動物の判別法や分類について

山田

所

属

国立研究開発法人水産総合研究センター増養殖研究所

徹
和彦

観音崎自然博物館（敬称略）

5

平成 28 年冬号

平成 27 年度魚類防疫士の認定
平成 27 年度魚類防疫士技術認定委員会において、平魚類防疫士技術認定委員：

成 27 年 12 月 17 日に実施された魚類防疫士技術認定

良永知義（東京大学大学院）、佐野元彦（東京海洋大試験に合格と判定された者を、同日付で魚類防疫士

学大学院）、森広一郎（独立行政法人水産総合研究セに認定しました。

ンター）、熊谷明（宮城県水産技術総合センター気仙
沼水産試験場）（敬称略）

平成 27 年度

魚類防疫士認定者（21 名）

認定番号

氏

名

一徳

所

属

867

静

地方独立行政法人青森県産業技術センター 内水面研究所

868

石川

哲郎

宮城県水産技術総合センター 気仙沼水産試験場

869

野口

大悟

山形県水産試験場

870

新関

晃司

福島県内水面水産試験場

871

渋谷

武久

福島県水産試験場

872

酒井

忠幸

栃木県水産試験場

873

早川

美恵

千葉県水産総合研究センター

874

飯島

純一

東京都島しょ農林水産総合センター 大島事業所

875

谷沢

弘将

山梨県水産技術センター

876

新海

孝昌

長野県水産試験場

877

藤井

亮吏

岐阜県水産研究所 下呂支所

878

木南

竜平

静岡県水産技術研究所 富士養鱒場

879

中村

砂帆子

三重県水産研究所 尾鷲水産研究室

880

吉田

太輔

島根県水産技術センター

881

谷村

誠児

公益社団法人山口県光・熊毛地区栽培漁業協会 光・熊毛地区栽培漁業センター

882

原川

翔伍

愛媛県農林水産研究所 水産研究センター

883

草原

陽香

長崎県五島振興局農林水産部水産課上五島水産業普及指導センター

884

築山

陽介

長崎県長崎振興局管理部県央水産業普及指導センター

885

宮本

一隆

宮崎県水産試験場

886

Marcy Nicole Wilder 国立研究開発法人国際農林水産業研究センター 水産領域

887

竹島

利

国立研究開発法人水産総合研究センター 瀬戸内海区水産研究所（敬称略）

日本水産資源保護協会◆季報

6

水産資源保護啓発研究事業実施した巡回教室、コンサルタント派遣、ブロック研修会の概要は以下のとおり。
巡回教室の開催
回

11

12

開催日

9 月 11 日

派遣依頼
機
関

広島県

11 月 25 日 和歌山県

開催場所

課

題

内

容

講師氏名
（敬称略）

呉市

種苗生産におけ 種苗生産の現場で発生する形態異常についてる形態異常
概説するとともに、親魚管理や卵質という観
福山大学
親魚の仕立てと 点からこれまでの対処法を再検討し、今後の有瀧真人
卵質にかかわる 飼育技術の考え方として、魚にとって住みや問題についてすい水槽を用意することが提案された。

西牟婁郡
白浜町

利用できる淡水は貴重であり、特に和歌山県の河川は透明度においてもすばらしいと写真
和歌山県の川の生物写真家の提示とともに解説を受け、今後も子どもた魅力
内山りゅう
ちや県外の人に伝え残していくことが強く推奨された。

ブロック研修会の開催
回

3

4

5

開催日

派遣依頼
機
関

10 月 22 日 山梨県

11 月 10 ～新潟県
11 日

11 月 20 日 愛知県

開催場所

会議名称

課

題

講師氏名
（敬称略）

富士吉田市

第 1 回養殖技術
我が国における養鱒業の現状と課題
講習会

全国養鱒振興
協会
小堀彰彦

長岡市

平 成 27 年 度 東
北・北海道魚類
防疫地域合同検討会及び魚類防 アユ冷水病について～検査法と現場対応
疫士連絡協議会
東北ブロック研
修会

東海大学
泉庄太郎

弥富市

平成 27 年度内水面ブロック研修 KHV 診断手法の動向について会

水産総合研究センター増養殖研究所
湯浅啓7

平成 28 年冬号

魚はなぜ性転換できるのか？
細胞と分子からみる性転換のメカニ
ズム
愛媛大学南予水産研究センター

准教授

太田 耕平

がいなくなった場合にメスの中で最も大きなものがオ

はじめにスへと性転換することが明らかとなった１、２）。すなわ

魚には性転換するものが多い。サンゴ礁にすむベラ

ち、社会構造の変化が性転換の引き金となる。逆に、科魚類やクマノミなどの熱帯魚に性転換魚が多いこと

イソギンチャクになわばりをもち、大きなメスと小さは知られているが、代表的な養殖魚であるマダイ、マなオスの一夫一妻で繁殖を行うクマノミでは、メスがハタ、クエなども性転換魚である。これらの性転換魚いなくなることにより、オスが性転換してメスとなる。

のなかには、メスからオス、オスからメス、さらにオ

それに伴い、さらに小さな未成熟の個体がオスとしてスとメスの双方向に何度でも換わることができるもの

成熟し、再び、一夫一妻を形成する。一方、クロダイのが存在する。また、成魚として産卵を経験した後に性仲間は成長が進むことによってオスからメスへ性転換転換するものもいれば、幼魚時代の限られた時期に生することが知られている１）。さらに、ハタ科でも成長殖腺の性を換えるものもいる。例えば、ベラ科、ハタや社会性が大きく関係すると言われており、どちらに科などは成魚のメスがオスへ、クマノミやクロダイの依存するかは種によって異なるようである。このよう仲間などは成魚のオスがメスへ性転換できる“機能的”に、よく調べられているものがいる一方で、性転換のな性転換魚であるのに対し、マダイは幼魚期にメスのきっかけがよくわかっていない魚種もいまだ多い。

一部がオスへ性転換し、成魚となった後は性転換を行

b）「なぜ、何のために性転換するのか？」わない“非機能的”な性転換魚である。実は、モデル実性転換の意義（究極要因）についても以前から盛ん験魚としてメダカと並んでよく利用されているコイ科に研究が行われている。特に、性転換を行うことで得のゼブラフィッシュも、幼魚期にいったんすべての個られるメリット（一生涯でつくることのできる子の数）

体がメスとなった後、一部がオスに性転換して成魚ととデメリット（性転換にかかる期間やエネルギーなどなる“非機能的”な性転換魚である。このように性転換魚には、いくつかのパターンがあり（図１）、魚類においては、広い系統分類群でみられる現象である１）。
こうした魚類の性転換現象は古くから知られており、そのユニークさから、多くの研究者に注目されてきた。さまざまに行われてきた研究のなかで、主なものとしては以下が挙げられる。
a）「いつ、どのようなきっかけで、どのように性転換するか？」
性転換魚の生活史、性転換の時期や形態等の変化について、フィールド調査や室内実験などにより、性転換を起こすための直接的なきっかけ（至近要因）が明らかにされてきた。スキューバダイビングによる観察法の普及や生殖腺の組織学的解析などにより、著しく研究が進展した。代表的なものとして、ベラ科の性転図 1 性転換の方向
機能的なものと非機能的なものがある。生殖腺内に卵巣組織と精巣組織の両方を維持したまま卵や精子を形成し、産卵を行うものもいる。

換が挙げられる。ベラ科の多くは大きなオスがサンゴ
礁や岩礁域などになわばりをもち、複数の小さなメスと繁殖を行う。こうした社会構造の中で、大きなオス
日本水産資源保護協会◆季報

8

のコスト）との比較が行われてきた。通常、魚類は哺腺の性（卵巣であるか精巣であるか）が性別の基準と乳類と比べて生殖器官が単純で、雌雄の形態差も少ななる。さらに性差がみられるものとして、性行動やそいため、性転換にかかるエネルギー（コスト）が少な

れと関連する脳の機能に加え、外部形態（体色、体形、いと想像されている。こうしたコストに対して、得ら鰭、総排泄口の形状など）に違いがあることも多い。

れるメリットが大きい場合に、性転換という性質が進加えて、生殖に関連する内分泌系などにも大きな性差化するという考えである。

が現れる。
このような性転換のメカニズムに関する研究は、内特に広く受け入れられているものとして、体長有利
３、４）。例えば、多く

分泌学、分子生物学、細胞生物学などの手法の発展にのベラ科の魚のように、岩礁域やサンゴ礁などになわ伴って進められてきた。例えば、女性ホルモンや男性ばりをもち、1 尾のオスが複数のメスと繁殖する場合

ホルモンなどの性ステロイドホルモンの関与、卵巣やには、繁殖相手となるメスの数に依存して自分の子孫

精巣の形成に関わる遺伝子の発現、さらに最近、卵巣の数が増える。したがって、オスでいたほうが得のよや精巣を形成する個々の細胞の機能についても詳しうに思われる。しかしながら、体サイズが小さいと大い知見が得られてきている。これらの研究により、よきな個体に負けてしまい、なわばりを維持することがうやく性転換現象に関わる詳細なメカニズムや、他のできない。そこで、小さいときはメスとして繁殖に加魚類との共通性、さらには哺乳類との普遍性や多様性

わり、成長してなわばりを持つことができるようになに関する理解が深まりつつある。本稿ではこうした研ればオスに性転換し、複数のメスと繁殖する。これに究内容について、筆者らの研究成果も交えながら紹介

より、一生涯の間に残す子の数が多くなるため、メスする。

性説（size-advantage model）があるからオスへの性転換が有利に働く。一方、クマノミはオスからメスに性転換する。これには、イソギンチャ

性転換の実験モデル

クを中心としたなわばりにおいて、一夫一妻の社会構

性転換のメカニズムを解析する上で 1 つの鍵となる造を持つことに関連すると考えられている。通常、オのが実験魚の選定である。性転換する魚はこれまでにスでは小さな個体でも多数の精子をつくることができ

約 300 種が報告されている１、５）。しなしながら、採集るのに対し、メスがつくることのできる卵の数は体サや飼育が困難なものや性転換を行う時期やきっかけ

イズに依存する。すなわち、一夫一妻の場合、1 度の産が明確ではないものも多い。一方、性転換のメカニズ

卵で生み出すことのできる卵の数は、メスの体サイズ

ムを詳しく解析するためには、採集や飼育が容易で、が大きいほど多くなる。したがって、クマノミの場合

実験室内でも簡単に性転換をする魚種が望ましい。こは、子孫をより多く残すために、小さいときはオス、れまでによく用いられている性転換魚としては、ベラ大きくなるとメスに性転換するように進化したと考え科、ハゼ科、タウナギ科、クマノミ、クロダイの仲間なられている。

どがある ６）。我々の研究室では、ベラ科の 1 種で、西このように体長有利性説は、いくつかの魚種におい日本沿岸に広く生息するホシササノハベラをモデルのてよく当てはまると考えられる。一方で、幼魚期に生1 つとして選び、研究を行っている。本種は岩礁域に殖腺の性が換わる“非機能的”な性転換魚や、成長に生息し、オスがなわばりをつくる。産卵期には次々と伴って性転換するものの多くについては、明快に説明

メスがそのなわばりを訪れ、オスと産卵を行うことがすることが難しく、今後の研究の進展が期待される。

知られている２）。四国や九州でも岩礁付近で釣りなど

c）「どのような仕組みで性転換するのか？」

により、容易に採集することが可能である。まず、筆上述のように、魚類は哺乳類と比べて生殖器官が単者らは、本種が性転換を開始するきっかけを調べるた

純で、雌雄の形態差も少ないため、性転換にかかるエ

めに、それらを採集して実験室に持ち帰り、オスとメネルギーが少ない、と考えられている。一方で、実際スの比率や尾数を変えるなどのさまざまな条件で飼育に性転換を成立させるためには、生殖腺（卵巣と精巣）実験を行った。それまでにベラ科やハゼ科の数種におや脳などの性が換わる必要がある。こうした理解をさいて、メスをペア（2 尾）で同居させると、相対的に大らに深める上で、性を換えるメカニズムについての研きい個体が性転換することが知られていた。しかしな究が進められている。

がら、本種ではメス 2 尾での同居で性転換は起こらな

魚類も哺乳類と同様に有性生殖を行い、メスではかった。そこで、さまざまな試行錯誤を重ねた結果、卵、オスでは精子をつくる。したがって、通常は生殖同居尾数を増やすことにより性転換が起こりやすくな
9

平成 28 年冬号

図 2 ホシササノハベラの性転換条件
メスの複数個体の同居により、最大のものがオスへと性転換する。同居の尾数が多いほど性転換が起こりやすく、6 個体
で確実に 1 個体が性転換する。

る傾向がみられ、最終的に、メスを 6 尾同居させることにより、必ず最大の 1 尾がオスへと性転換することが明らかとなった７）（図２）。
なぜ性転換を誘導するための尾数が異なるのかは、その種の生態と密接に関連していることが想起され、とても面白い現象である。いずれにしても、本種では社会環境を変えることにより、確実に性転換を誘導させることが可能となった。こうした実験系は性転換の生理的な変化を詳細に解析する上で好都合となる。

内分泌系の変化
性転換の生理メカニズムに関する研究において、これまで盛んに研究されているものの 1 つに女性ホルモン（エストロゲン）、男性ホルモン（アンドロゲン）と

図 3 ホシササノハベラの性ステロイドホルモン生成経路
アロマテース（白い矢印）によりアンドロゲンからエストロゲンへと転換される。

いった生殖腺で生成される性ステロイドホルモンが挙げられる。魚類でも性ステロイドホルモンを介して卵形成や精子形成を調節しており、哺乳類と同様に、メる（図３）。ここで興味深いのは、メスとオスで同様に

スではエストロゲン、オスではアンドロゲンが多く分生成されてきたアンドロゲンの中間代謝物が、メスに６）泌される 。ベラ科、ハタ科、ハゼ科などのさまざま

おいては最終的に芳香化酵素（アロマテース）によっな性転換魚においても、一般的にメスからオスへの性てエストロゲンに転換されることである。多くの性転転換の際には血中のエストロゲンが急激に減少し、ア換魚において、生殖腺のアロマテース活性がメスから

８）

ンドロゲンが上昇する 。ホシササノハベラにおいてオスへの性転換の際には低下、オスからメスへの性も同様に、性転換に伴って、アンドロゲンの血中量が転換の際には上昇する。また、実際にメスへのアロマ

７）上昇した 。一方で、エストロゲンについては、減少テース阻害剤やアンドロゲンの投与により、オスへのが比較的緩やかであった。これは本種の産卵期が 3 ヶ性転換を誘導できる。逆に、オスへのエストロゲンの月程度と熱帯性のベラなどよりも短く、通常は卵巣が投与により、メスへの性転換を誘導できる６、８）。ホシ

退行した後の非産卵期を中心に性転換を行うためであ

ササノハベラでも、こうしたアンドロゲンおよびエスると考えられた。

トロゲンの投与により、メスからオスおよびオスからエストロゲンとアンドロゲンは共に、コレステロー

メスのどちらの方向へも性転換を誘導することに成功

ルを出発点にして、途中までは共通の経路で生成されしている ９）。すなわち、アンドロゲンとエストロゲン

日本水産資源保護協会◆季報

10

の分岐点にあるアロマテースという 1 つの酵素が、生殖腺の性を切り換える中心的なスイッチとして機能していると考えられる。

遺伝子発現パターンの変化
上記の結果に伴い、アロマテース遺伝子（cyp19a1）について精力的に研究が行われてきた。その結果、血中ホルモン量の変化と同様に、アロマテース遺伝子の発現量は卵巣で高く、メスからオスへの性転換に伴い著しく減少することが明らかとなっている ８）。逆に、オスからメスへ性転換するクロダイでは、アロマテー

図 4 性転換に伴う遺伝子発現パターンの変化

ス遺伝子の発現が性転換に伴い上昇する 10）。さらに筆者らは、性ステロイドホルモンを合成する一連のステいるのである。現在、筆者らも、入手が容易で飼育環

ロイド代謝酵素遺伝子を特定し、性転換の際にアロマ

境調節により周年にわたり産卵を維持できるカタクチ

テースと連動して減少、および増加するステロイド代

イワシを海産魚モデルとして選び、雌雄異体魚におけ

７）

謝酵素の存在を明らかにすることに成功した 。すな

る性的可塑性の実態、さらには魚種間における普遍性

わち、性転換の際にアロマテースと連動して、性ステロ

や多様性を明らかにすべく、研究を進めている。

イドホルモンの合成に関わる一連の遺伝子の発現パ

細胞の変化

ターンが著しく変化（シフト）を起こすことが示された。
こうしたステロイド代謝酵素に加えて、それらの遺性転換に伴い、生殖腺組織が卵巣と精巣との間で転伝子発現を制御する転写因子や、細胞の増殖・分化に換するためには、遺伝子発現のみならず、生殖腺を構関わる成長因子などについても研究が進められ、性転成する細胞の形態、種類、機能などが換わる必要があ

換に伴い変動するさまざまな遺伝子が見つかってきてる。例えば、アロマテースは卵巣にあり、メスの生殖

８）細胞（卵のもとになる細胞）を取り囲む体細胞（厳密にいる 。
ホシササノハベラにおいても同様に、卵巣特異的には顆粒膜細胞）で強く発現している。同時に、この細発現する遺伝子と精巣特異的に発現する遺伝子が認め胞ではアロマテース遺伝子の発現に関わるさまざまな７）られ、これらの発現は性転換に伴い変化していた 。

転写因子を発現している。一方、オスの体細胞でも同注目すべきことに、これらの遺伝子の多くは脊椎動物

様に、アンドロゲン合成に関わる遺伝子やその発現制間で広く保存されており、他の性転換魚や雌雄異体の御に関わる遺伝子が発現している。加えて、これらの魚にもみられる因子であった。例えば、メダカなどの細胞では、自身の形態や機能の維持、さらには隣接す

雌雄異体魚の場合には、発生初期や幼魚期にこれらのる生殖細胞などとの情報交換、支持、制御を行うため遺伝子が卵巣や精巣への分化に従って、それぞれ性特のさまざまな遺伝子を発現している。すなわち、生殖８）

異的な発現パターンを示す 。その後、この発現パ腺を構成する細胞にはそれぞれ、その形態や機能を司

ターンを維持し、一生涯を通じて同じ性のままであるタンパク質やその発現制御に関わる特異的な遺伝子る。一方で、性転換魚では、この発現パターンを一生の発現パターンが認められる。言い換えると、こうしの途中で換えることが可能である。すなわち、この発た特異的な遺伝子の発現パターンにより、その細胞の現パターンを自発的に換える能力こそが、性転換魚の形態や機能が生み出されている。

大きな特徴であるといえる（図４）。

ところで、生殖腺には大きく 2 つの系列の細胞がみ

最近、きわめて興味深いことに、性転換魚のようなられる。1 つは卵・精子とその分化過程にある細胞を自発的な転換ではないが、人為的なアロマテースの阻含む生殖細胞系列であり、もう一方は、それらの生殖害により、メダカやティラピアといった雌雄異体魚に細胞の周囲にあり、生殖細胞の増殖や分化を制御する

おいても、成魚となって産卵を経験したメスを産卵・体細胞系列である（図５）。
生殖腺において性転換（卵巣と精巣との切り換え）

受精可能なオスへと性転換させうることが明らかと。すなわち、雌雄異体魚であっても生殖腺のが起こる際には、これらのうちの 1 つもしくは限られ性を機能的に転換するための分子・細胞基盤をもってた細胞種において遺伝子の発現パターンに変化が起こ

なった

11）

11

平成 28 年冬号

図 7 個体の性に応じて生殖幹細胞から卵や精子になる細胞が供給（予想図）

一方で、生殖細胞については直接的に卵が精子に変化したり、精子が卵に変化したり、ということは考えにくい。実際に、メスからオスへ性転換する際に分化
図 5 生殖細胞と体細胞
生殖腺は生殖細胞とそれを囲む体細胞で構成される。
性転換に伴って体細胞の機能が転換すると予想される。卵巣と精巣は元は同じ細胞集団から性分化のプロセスを経て形成される。

の進んだ卵母細胞（将来、卵になる生殖細胞の 1 種）は退行が認められる 13）。したがって、生殖細胞の供給には、比較的未分化な生殖細胞が関与していると予想される。なかでも生殖幹細胞が候補の 1 つである。たいへん興味深いことに、ニジマスにおいて始原生殖細胞
や卵巣や精巣から取り出した生殖幹細胞をメスまたはオスの生殖腺に移植した場合、これらの細胞はもとの遺伝的な性によらず、移植された個体の性に従い、卵や精子へと分化することが明らかとなっている 14 ～ 16）。
したがって、性転換魚においても、こうした卵と精子のどちらにでも分化できる生殖幹細胞が性転換後の個体の性に従い、卵や精子を供給しているものと予想される（図７）。現在、筆者らも生殖幹細胞で発現する遺伝子を指標に、その性的可塑性に関する解析を進めており 17）、今後、これらの生殖幹細胞の性転換における挙動やそのメカニズム、さらには体細胞を含めたそれぞれの細胞の分化段階の違いや可塑性の有無など、さ図 6 カクレクマノミ幼魚期の生殖腺組織切片
メスの細胞とオスの細胞が混在する。各種生殖細胞を体細胞の細胞が包む。生殖細胞の隙間を薄く囲んでいるのが体細胞である。

まざまな課題について解決できると期待される。

哺乳類との違いり、その細胞自身の機能に転換が生じることが始まり

アロマテースをはじめとして、魚類の生殖腺で発現であると推測される。さらに、転換した細胞からの情する遺伝子の多くは哺乳類と共通性があり、同様の性報が周囲の細胞へと接着性因子や液性因子を介して伝差がみられるものが多い。最近、きわめて興味深いこ

わり、最終的に、さまざまな細胞群が協調して変化すとに哺乳類においても、卵巣もしくは精巣に分化した

ることにより、卵巣組織と精巣組織との間の転換を成後に、人為的に特定の遺伝子をノックアウトすること立させるものと考えられる（図６）。

により、卵巣組織を精巣組織へ、逆に精巣組織を卵巣

興味深いことに、体細胞（全てかどうかは不明であ組織へと転換させることに成功している 18、19）。また、

るが）については、メスとオスとの細胞間で換わる能

これらの研究においても、メスの体細胞とオスの体細力があるとみられている。例えば、上述した雌雄異体

胞との間で分化転換が起こることが示唆されている。

のティラピアにおいて、人為的にメスからオスへの性

すなわち、哺乳類でも遺伝子のスイッチにより、卵巣転換を誘導したところ、メスの体細胞（顆粒膜細胞）

組織と精巣組織の間での転換は起こりうるのである。

がオスの体細胞（セルトリ細胞）へと換わる（分化転換

卵巣と精巣は、もともと発生過程で同一の細胞集団

12）する）ことが示唆されており 、性転換魚においてもから分化したという履歴を持つ（図５参照）。メスの体詳細な研究が進められている。

細胞とオスの体細胞の発生起源も同じであるとはい

日本水産資源保護協会◆季報12

図 9 魚類と哺乳類の卵巣幹細胞の違い（予想図）
哺乳類では全ての生殖細胞が胎児期に減数分裂により卵母細胞へと分化するため、未分化で増殖能を持つ幹細胞が残っていないとされている（哺乳類の卵巣幹細胞の存在については未だ諸説あり、幹細胞が存在するとする研究者もいる）。幹細胞があれば図 7、8 のよ
うに、個体や生殖腺の性転換に従って、新たに卵または精子へと分化する細胞が供給されると考えられる。

図 8 生殖細胞の性は体細胞の影響を受ける
胎児期などの性が分化する前の生殖細胞を卵巣や精巣の体細胞と一緒にすると、体細胞の性に応じて生殖細胞の性が分化する。

え、全く機能の異なった細胞間で転換が起こるという現象はきわめて興味深い現象であり、今後の詳しい解卵を生み出すと共に、絶えず卵へと分化する生殖細胞析が待たれるところである。

が供給される。これは、哺乳類のメスでは一生涯で排また、先のニジマスの例と同様に、哺乳類において卵する卵の数に限りがあるのに対し、魚類では一生をも胎児期の生殖細胞の性は体細胞の影響を受けること

通じて卵を産む能力を有しているという違いにもなが以前から知られている

20）。例えば、胎児期にみられる。ちなみに精巣では、魚類と同様に哺乳類においてる性分化前の生殖細胞を取り出し、培養条件下でメスも生殖幹細胞（または精原幹細胞）の存在が知られての体細胞組織やオスの体細胞組織と併せて培養するこ

おり 23 ～ 25）、ほぼ一生涯を通じて精子をつくることがとにより、遺伝的な性にかかわらず、生殖細胞のメスできる（図９）。

への分化（雌性化）やオスへの分化（雄性化）がそれぞ

注）ただし最近、哺乳類においても卵巣に生殖幹細れ起こる 。著者らのグループでも同様に、生殖細胞胞があるとする研究成果が出てきており、熱い議論がを培養条件下でメスの体細胞由来の因子に曝すことに続いている。

20）より生殖細胞の雌性化を、オスの胎児期体細胞と併せて培養することにより雄性化を進められることを明ら

性転換のメカニズムについての補足

かにした 21、22）。すなわち、哺乳類の生殖細胞は体細胞

これまでに述べてきたように、性転換魚は自発的にに依存して性分化する。したがって、もし未分化な生

特定の遺伝子を発現するスイッチをオスのパターンと殖細胞（生殖幹細胞）があれば、体細胞の性転換に併

メスのパターンとで切り換えることができる。このス

せて卵や精子へ分化すると考えられる（図８）。

イッチは、社会環境の変化で性転換するものについて

しかしながら哺乳類の場合、精巣組織から卵巣組織

は外因性のものであり、社会環境の変化を認知し、脳へ転換させた場合にはメスの生殖細胞が認められるを介して生殖腺に情報が伝達されていると考えられのに対し、卵巣組織から精巣組織へ転換した場合にはる。しかしながら、その情報伝達経路の実態は詳しく

オスの生殖細胞がみられないようである。これにわかっていない。また、成長の途中で性転換するもの

は、生殖幹細胞の有無が関係していると考えられる。

や非機能的性転換を行うものについては、どのような魚類とは異なり、哺乳類の卵巣では胎児期に全ての生プロセスで性転換の引き金が引かれるのかはよくわ

殖細胞が減数分裂を開始し、卵母細胞へ分化するた

かっておらず、内因性の要因が関与する可能性を含めめ、増殖能力を持つ生殖幹細胞が残っていないとされて、今後の研究が待たれるところである。

18、19）ている。言い換えれば、哺乳類の卵巣では胎児期に生さらには、そもそもこうした性転換現象がどのよう殖幹細胞が全て卵母細胞に分化し、これらを少しずつなメカニズム（遺伝的変異？）で起こったか？、とい放出するのに対し、魚類の卵巣では生殖幹細胞が存在う問題も残されている。性転換魚は、ベラ科やハタ科しており、適切に細胞増殖を行うことにより、大量になどで多いものの、それ以外の分類群を含めて系統的
13

平成 28 年冬号

に多岐にわたるため、ある程度の種分化が進んだ後とその生理・分子機構 . 日本水産学会誌 75: 636 － 639.
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に、それぞれの生息環境において多発的に起こったと考えてよいかもしれない。最近のゲノム解析技術等の著しい進展は、こうした問題も近い将来に明らかにできるのではないかという期待を抱かせる。

水産技術への応用
性を自由にコントロールできることにはどのようなメリットがあるだろうか？

例えば、種苗生産の現場

では卵を 1 度に大量に得る必要があるため、親魚としてある程度の大きさのメスが必要である。特にマハタやクエなどの性転換魚では、親魚が性転換をしてしまい、採卵用の大きなメスを維持することが困難な場合も多い。メスと期待して取り上げたらオスだった、ということもあり、余分な労力や飼育コストがかかる。
一方で、オスでは高成長、高耐病性といった優良形質を持った個体の精子を凍結し、長期的に人工授精に利用することができる。したがって、性のコントロール
を自由自在にできるようになれば、必要なときに必要な特性を備えた性の個体を得ることができ、種苗生産や育種のさらなる効率化を図ることができる。極端なことを言えば、親魚として雌雄の両方を維持する必要もなくなるかもしれない。
性転換魚はこのような研究には格好の材料であり、雌雄異体魚をはじめとする他種との相違を詳しく調べることにより、“性転換のレシピ”を解き明かすことができると考えられる。これを元に、雌雄異体魚を含むさ
まざまな魚種において性を簡便に統御するための技術を開発することができる。将来は、こうした性統御技術に加え、成熟統御技術、生殖細胞の培養・分化制御
技術、生殖細胞の保存・移植技術などと併せることにより、種苗生産や育種が格段に加速すると予想される。
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日本水産資源保護協会◆季報14

さけ・ます類の病原細菌およびウイ
ルスの卵を介した垂直感染防止法
北海道大学大学院水産科学研究院

招聘教員

吉水 守

さけ・ます類の孵化放流事業あるいは養殖業の基本

は避けるべきであり、アルデヒド系の消毒薬は反復使

は、健康な親魚から受精卵を得て病原体のいない飼育用に耐えるものの温度の影響を受けやすい。魚類の病

用水で卵管理をし、孵化した仔稚魚の飼育を行うこと

原細菌・ウイルスに限ってみれば、逆性石鹸液が臭いである。そのためには、まず飼育施設・器具・機材のもなく両者の条件をクリアーしている１）。さらに、消衛生管理を行い、病原体フリーの飼育用水を確保する

毒済み区域への立ち入りに際しては専用の長靴を使用ことが重要である。採卵には健康な親魚を用いるが、し、着衣も専用のものに着替えるといった心構えが必それが難しい場合には、受精前に卵洗浄と卵消毒を行要である２）。

い孵化場内に病原体を持ち込まない、採卵場および洗卵排水の殺菌を行う、発眼初期に卵消毒を実施する

２．病原体フリー飼育用水の確保ことである。さらに孵化した仔稚魚の病原体検査を定

さけ・ますの孵化施設の多くは湧水を使用してい期的に実施し、河川水使用の飼育池への移動あるいはるが、稚魚池の飼育水が不足する場合、河川水の使用

放流に際しては健苗性を確認する。今後の課題としてを余儀なくされる。この場合、河川水を殺菌すること

は、養殖魚を対象としたワクチンの開発あるいは耐病がリスク回避上必要である。飼育用水の殺菌に関して系群の確立などがあげられる。魚類防疫に関しても、は、水そのものの理化学的性状を変えることなく大量

魚種および病原体ごとにリスク評価を行い、重要な管の水の殺菌処理が安定して行える装置が求められる。

理点の抽出とその実施状況の記録が重要である。今回

現在のところ、紫外線、オゾンあるいは電解による殺は親から仔稚魚に卵を介して伝播する病気対策につい菌が一般的であるが、淡水の殺菌には紫外線あるいはて、現在までに明らかになっていることを紹介したい。

オゾン殺菌が主として用いられる４）。オゾン殺菌は一時導入が進んだものの、メンテナンスやコストの面

１．飼育器具・機材および施設の衛生管理で、現在はほとんど用いられていない。

作業者の手指や長靴をはじめ、飼育器具・機材の

紫外線を用いる場合、病原体の紫外線感受性を求微生物管理が病原体の伝播防止上きわめて重要であめ、細菌の光回復効果と安全率を考慮して照射線量がる。飼育施設、飼育器具、飼育池等は受精卵の搬入前決められている。魚類の病原体は紫外線感受性から、に病原体を殺菌あるいは排除しておく、飼育器具お高感受性グループと低感受性グループに分けられる。

よび機材は日頃から常時消毒し防疫に努める必要がエンベロ－プを有する各種ウイルス、DNA ウイルス

ある

１、２）

およびグラム陰性細菌が高感受性グループに含まれ、。

消毒薬は種類が多く、その作用機序も異なり、また10４μW・sec/cm２（10 mJ）の紫外線照射で 99.9％以上

病原体によって感受性も異なる。病原体ごとに適切なの殺菌あるいは 99％以上のウイルスの不活化が可能

３）

消毒薬を選択する必要がある 。各種消毒薬の中でもである。一方、2 本鎖 RNA ウイルスやグラム陽性細菌、魚類に対して比較的毒性が少なく、除去が容易でかつカビ、原虫、寄生虫は感受性が低く 10５～６μW・sec/cm２

多量に使用しても安価なものが用いられている。幸い

程度の照射が必要である ４）。水深は紫外線の透過率

魚類の病原細菌・ウイルスは、いずれも市販の消毒剤（5 cm で 10％減衰）を考慮してなるべく浅くして、影の公称有効濃度で十分殺菌・不活化される。しかし、になる部分がないよう水中の大型粒子を除去する必要

冬期の低温下での使用や飼育魚の糞・残餌、体表粘液がある。また低温下では効力が若干低下する。現在の等有機物が付着したものの殺菌には一部不適な消毒

紫外線ランプの出力は 8,000 時間経過で約 20％低下す薬がある。塩素やヨードといったハロゲン系の消毒薬る。年 1 回の交換が必用である。

は低温下でも効果の減少はみられないものの反復使用

その他、中空糸濾過膜を用いた濾過除菌やホットプ
15

平成 28 年冬号

図１ 滅菌チップを用いた個体別の体腔液採取法７）
図２ 受精直後卵に IHNV を接種したサクラマス卵の累積死亡率および卵内 IHNV 感染価の消長 11）

レートを用いた加熱殺菌あるいはヨードや次亜塩素酸
ナトリウムを滴下する方法も有効であるが、経済性や魚毒性等で問題があり、実用化には至っていない５）。

３． 親魚の検査法および健康親魚の確保あるいは選別法採卵用親魚の健康状態の把握とその管理は、孵化事業の成否を左右すると言っても過言ではない。サケ科魚類の場合、感染耐過してキャリアーになった個体は、成熟期に生殖産物、特に体腔液（卵巣腔液）あるいは精液に病原体が出現する。催熟畜養中に病原体を出す個体が存在すると、催塾群全体に水平感染が起こり、体図３ 発眼卵に IHNV を接種したサクラマス卵の累積死亡率
および卵内 IHNV 感染価の消長 11）

腔液中の病原体保有個体が増加し６）、生み出された卵あるいは精子は病原体に汚染される。このリスクを避けるために、採卵親魚の検査を実施し、催熟中の水平出率に大きな差がみられ、IHNV が精子に付着し、精８）感染を防止する必要がある 。せっそう病対策から催漿からウイルスが分離できないことが明らかになり、

７）

塾蓄養池の収容尾数と溶存酸素量が示されている 。

検査は雌親魚を対象としていた。Mulcahy & Pascho がさらに受精後発眼に至るまでに約 1 ヶ月、さらに孵化

IHNV が付着した精子の電顕写真を Science に掲載し９）、までに約 1 ヶ月を要するために、採卵時に体腔液を採IHNV は受精時に精子と共に卵内に侵入し、垂直感染

７）

取し（図１） 、細菌およびウイルスの検査を行い、病するという知見が報告された 10）。IHNV 汚染精子を用

原体保有状況を把握している８）。

いた試験では検体数が少なく死卵や発症は認められなかったが、受精直後卵に IHNV をガラス針を用いて注４．発眼卵消毒の重要性

入すると、感染した受精胚は 8 ～ 16 細胞まで増える

さけ・ます類の場合、一度細菌やウイルスによる病

ものの死亡し、増殖したウイルスは臍嚢内容物によっ気になると、成熟期に体腔液や精漿に病原体が出現て不活化された（図２）11）。発眼期に IHNV を同様にガし、卵あるいは精子が病原体に汚染されることが知ら

ラス針で注入すると、ウイルスは胚に感染し、急速にれている。1970 年代に米国西海岸およびわが国で伝染

11）
増殖し胚は死亡した（図３）。検卵の際、ウイルスに性造血器壊死症（IHN）の感染が広まり、種卵としての感染して死亡した発眼卵を壊すとウイルスが飛散し、発眼卵の移動が大きく関わっていることが明らかにな感染を広げる危険性がある。この危険性の回避と省力

り、ポピドンヨード剤 50 ppm・15 分間による発眼卵化を目的に自動検卵機に検卵後の卵を消毒する装置が表面の消毒が IHNV の伝播防止に有効であることが確付けられた 12）。以上の知見は、胚が形成され、発眼期

かめられ、世界的に広く用いられるようになった。

に達した卵の細胞膜の内部には病原体が存在しないこIHN の場合、同一飼育群の体腔液と精漿でウイルス検とを意味する。発眼卵の表面を消毒して病原体を殺し日本水産資源保護協会◆季報16

図４ 発眼卵消毒の根拠 11）たのち、病原体フリーの孵化・飼育用水で管理すれば、ることを明らかにした 15）。2000 年には受精したギンザ

健康な孵化稚魚を得ることができる。これが現在、発ケ卵を 10８、10６、10４CFU/ml の菌液に浸漬し、吸水さ11）
眼卵消毒を行っている根拠である（図４）。上記手法

せると 10８CFU/ml 区でのみ卵内感染が起こることをの普及により稚仔魚期の病気の発生は激減し、サクラ

報告している 16）。しかも、侵入した F. psychrophilum は

マスやニジマス、ベニサケの IHN 対策が軌道に乗り、卵の細胞膜と卵膜の隙間に留まり、徐々に増殖して 10７

ニジマス養殖は産業として成立するようになった。同

CFU/ml 程度まで増加し、この様子は蛍光抗体染色法

様の知見はサケ科魚ヘルペスウイルス（OMV）でも得で確認されている 16）。F. psychrophilum は受精卵の卵細られている 13）。細菌を臍嚢内容物に混ぜるとせっそう

胞膜内には侵入しないため胚発生は順調に経過し、発病原因菌 Aeromonas salmonicida や細菌性腎臓病（BKD）

眼率および孵化率に影響はみられないことも報告され原因菌 Renibacterium salmoninarum はじめ多くの細菌ている。しかし、孵化時に仔魚の体表に触れ、感染がは良好に増殖する。このことは発眼胚は感染していな

成立した場合にはいずれ発症することになる。卵内感いことを意味し、胚の安定期である発眼期にポピドン染が成立した例はいずれも高濃度汚染卵であり、卵表ヨード剤で消毒すると、卵表面に付着している細菌を面の高度な細菌汚染は卵内感染力が成立するための重殺すことができる。しかし、BKD と冷水病は発眼卵を要な要因であることが指摘されている。全国調査で養消毒しても卵を介した垂直感染が起こり、近年、別の殖サケ科魚類の中には 10７CFU/ml 程度に保菌してい侵入様式が存在することが明らかになった。

る親魚が一部で見つかることを報告している 17）。このような親魚から採卵された卵を受精させ、飼育した場

５．未受精卵の卵洗浄の重要性

合には卵内感染が起きている可能性があり、卵の汚染

発眼卵消毒が普及したあとも発症がみられ、卵を度を下げることにより卵内感染のリスクを小さくする
ための対策が必要である。

介して垂直伝播する病気として伝染性膵臓壊死症（infectious pancreatic necrosis；IPN）、BKD および細

ところで、内水面のさけ・ます養殖においては、人

菌性冷水病（冷水病）が知られている。冷水病原因

工採卵の際に生じる潰卵が受精を阻害することから、

菌 Flavobacterium psychrophilum に関しては、Kumagai

古くから採卵した未受精卵をまず等調液で洗浄する等

らが米国から輸入した発眼卵を到着直後にヨード剤

調液洗卵法 18、19）が普及している。採卵時の卵には糞、50 ppm・15 分間消毒しても病気が発生したことを報

血液、卵殻および過熟卵などが混じるため、まずボー

告し、翌 1998 年にはギンザケ・ニジマス・サクラ

ルなどの容器に収容した未受精卵に等調液を加えてマス卵を人工授精直後、吸水前に F . psychrophilum 培

攪拌し、上清とともに固形物を洗い流す洗浄（濯ぎ洗

14）

７～８

CFU/ml に懸濁した液に 30 分間浸漬卵）を 2 ～ 3 回行う。次に、卵をザルに移し換え、等調した後、通常の卵管理をした場合、卵内感染が成立す

液をシャワー状に散布して潰卵成分を洗浄する作業

養菌体を 1017

平成 28 年冬号

表１ 等調液洗卵法の除菌効果
試験区

洗卵工程

複合洗卵

第 1 回濯ぎ洗卵

F. psycrophylum（log０CFU / ml）
洗卵前

洗卵後

除菌量

洗卵前

洗卵後

除菌量

6.2

5.7

0.5

8.3

7.3

1.0

第 2 回濯ぎ洗卵

5.7

5.2

0.5

7.3

6.3

1.0

シャワー洗卵

5.2

2.5

2.7

6.3

3.1

3.2

6.1

3.7

2.4

8.4

5.7

2.7

合計
単独洗卵

シャワー洗卵

試験区

洗卵工程

3.7

IHNV
（log 10 TCID50 /ml）
洗卵前

複合洗卵

洗卵後

除菌量

5.2

OMV
（log 10 TCID50 /ml）
洗卵前

洗卵後

除菌量

第 1 回濯ぎ洗卵

7.4

6.1

1.3

5.4

4.6

0.8

第 2 回濯ぎ洗卵

6.1

5.4

0.7

4.6

3.9

0.7

シャワー洗卵

5.4

3.1

2.3

3.9

1.4

合計
単独洗卵

A. salmonicida（log０CFU / ml）

4.3

シャワー洗卵

7.1

4.6

2.5

2.5
4.0

5.1

1.9

3.3

（シャワー洗卵）が行われている。この等調液洗卵法は受精率を向上させる目的で普及している作業工程であるが、洗卵によって病原体を含む体腔液が洗い流され、卵表面が洗浄されることによって菌数が下がり、卵内感染のリスクが低くなっていることが考えられる。
サケ科魚類の採卵親魚の病原体保有に関しては、体腔液から F. psychrophylum が 10 １～７CFU/ml 20）、A. salmonicida
が 2×10１～ 8.3×10６CFU/ml 21）、R. salmoninarum が 4.0
×10９cells/ml 22）、IHNV および OMV が 101.2 ～ 43 および101.8 ～ 2.1 TCID50 /ml 23）程度分離されることが報告されている。小原ら 24）は、内水面の養殖サケ科魚類の人工採卵において、受精成績の向上を目的として普及している等調液洗卵法が、病原体に汚染された卵の汚染度を下げ、卵内感染の防止に役立っているのではないかと考え、洗卵法の除菌効果を定量的に把握するための試験を行い、F . psychrophylum、A . salmonicida、IHNV

図５ 人為感染卵の感染率と浸入した細菌の消長 25）

および OMV による汚染卵を等調液で濯ぎ洗卵すると1 回洗卵するごとに細菌あるいはウイルスの数は 1 桁

その防止には受精前洗卵により吸水・受精時の卵表（90％）減少し、通常行われている濯ぎ洗卵 2 回で 2 桁

面の菌数を下げることが重要である。確実な対処法は（99％）減少、シャワー洗卵でさらに 2 桁（最終的に体腔液に病原体を持たない親魚を採卵に用いることで99.99％）減少し , 洗卵はきわめて有効な防除法である

あるが、Kumagai and Nawata 27）は卵を媒精前に PBS で調24）ことを報告している（表１）。さらに、卵表面の生菌数整したヨードで消毒することにより F . psychrophylum

７

２が 10 /cm 以上の場合、F. psychrophylum のみならず多の経卵感染を防ぐことができることを報告している。

くの細菌が卵門から囲卵腔に落ち込み、A. salmonicida

細菌性腎臓病原因菌 R . salmoninarum に関しても 2 回をはじめ大部分の細菌は死滅するが、F. psychrophylumの濯ぎ洗卵とシャワー洗卵により卵表面の生菌数をは囲卵腔で生存することが確認された（図５） 。しか

10４～６CFU/cm２に抑えることができ、この数値はエリス

もこの現象は未受精卵でも起こり、卵門周囲に存在す

ロマイシン投与時の効果に近く、現在エリスロマイシンる細菌（図６） が、吸水時に落ち込むことにより起こ

投与群と洗卵群の比較を行っている。R . salmoninarum

るものと考えられた。

の生菌数が求められるようになり 28）両者の効果が示

25）

26）

日本水産資源保護協会◆季報18

図６ ３種の病原細菌汚染ニジマス卵の卵門と付着細菌 26)
表２ 親魚検査結果と経卵感染対策

せれば、薬剤を使用しないで洗卵法を採用すべきと考

卵内感染経路・卵膜形成前？（R. salmoninarum：R. s.）・体腔液で卵が汚染される
卵膜小孔経由？（P. salmonis）
卵門経由囲卵腔に－生存（冷水病菌、R. s.）
卵門経由囲卵腔に－死滅（A. salmonicida）
・精子と共に侵入、受精胚に感染
胚は死亡・ウイルスも不活化（IHNV、OMV）
胚は死亡・ウイルスは活性保持（IPNV）

える。
一方、ウイルスの場合はどうかということで、予備的な試験を行った。まず採卵直後のサケ卵を Hanks’BSS（HBSS）で 50 ppm に調整した水産用イソジン液で 15分 間 消 毒 後、HBSS で 3 回 洗 浄 し、10７ TCID50 /ml のIPNV 懸濁液および 10６TCID50 /ml の IHNV 懸濁液中に15 分間浸したのち吸水し、CHSE-214 細胞を播いた 24

対策
A
A
A
C
C
D

A：親魚検査で陽性なら卵を使用しない
B：親魚検査で陽性の場合、洗卵・受精前卵消毒・発眼卵消毒を実施し、孵化仔魚の経過を観察
C：親魚検査で陽性の場合、発眼卵消毒を実施し、孵化仔魚の経
過を観察
D：死卵は消毒後廃棄

well plate に 1 粒ずつ 8 穴に収め、1 週間後および 2 週間後に卵膜を切開し、7 日間細胞を観察した。試験は 2回行ったが、結果は両検体共に陰性でウイルスは分離できなかった。対象に設定した F. psychrophylum は 1/8と 1/8 の割合で分離された。吸水により卵重量は 1 粒
あたり 35 μg 増加した（60 粒 3 回の平均）。IPNV は卵以上の卵を介した垂直感染の可能性をいくつかのパ内容物中で 2 週間安定で感染価に変化はなかった。仮ターンに整理し、それぞれの対処法を書き出すと表２４のようになる。

にウイルスが卵門から吸い込まれたとすると 35×10

TCID50 の IPNV が侵入したことになる。しかし安定なウイルスが分離できなかったのでこの仮説は否定され

６．稚仔魚の病原体検査・健苗性の確認る。2 番目は直径 60 nm の IPN ウイルが直径 6 mm の

異常遊泳個体あるいは瀕死個体を見つけた場合は速サケ卵全体を覆うと仮定すれば 10

11 ～ 12

TCID50 /ml 以上

やかに検査する。発症魚の検査には病患部を含む部位

が必用となり、供試ウイルス数が少なすぎた。この可のスタンプ標本を作製し、モノクローナル抗体を用い能性は否定できないが、この数値は非現実的である。3た蛍光抗体法を用いて行う方法が最も早く、高精度で番目は IPNV も囲卵腔内に落ち込んだものの感染性が診断できる。発症の有無にかかわらず定期的に検査を消失した可能性である。この点に関しては今後の研究する場合、培養可能なウイルスであれば一度細胞に接課題である。細菌が入るのにウイルスが入らないとす

種して 1 ～ 2 日培養し、培養細胞を PCR に供する培る根拠は今のところ見いだせない。

養併用 PCR 法が最も精度が高い 29）。
19

平成 28 年冬号

け・ます類のように稚魚を対象にする場合には浸漬あ７．採卵場および洗卵排水の殺菌

るいは経口ワクチンの開発が望まれる。さらにワクチ

飼育排水はその量が多く、前述の紫外線あるいはオン投与魚の尾数が数十万尾になると、注射をするのはゾンでの殺菌は技術的に困難である。しかし、魚病対容易な作業ではない。ブリ属およびヒラメを対象とし策はもちろん環境対策からも効果的な排水の殺菌が必たワクチン注射装置が開発されている 33）。装置には電要である。現実的には採卵場の排水および洗卵排水の気麻酔装置を組み込むことも可能である。注射時の麻殺菌が急務である。採卵場の排水はそのまま蓄養池あ酔の効き過ぎによる死亡や逆に麻酔がかからない等のるいは親魚遡上水路に戻されるため、病原体が存在す

事故の防止に役立つ。

７）

ると再感染が起こり悪循環を繰り返す 。採卵後期の水産用ワクチンを開発する上で最も大きな障害は、方が親魚の病原体保有率が高いのは採卵排水による可1 尾あたりのワクチンの価格である。現在の魚の価格能性が否定できない。発眼卵の消毒はヨード剤を使用

では、ワクチン費用が魚価に占める割合が大きく、まするためその排水は問題ないものの、洗卵排水は病原たワクチンメーカーも 1 尾あたりの価格を高く設定で体を含むため採卵排水同様危険である。前述のようにきない上に開発経費も重くのしかかる。さらに開発さはヨード剤を含む等張液での洗れたワクチンは対象魚種を増やすたびに認可申請を行卵を推奨している。現在北海道のさけ・ます孵化場のわなければならない。このような現状ではあるが、ワ一部では活性汚泥方式を採用した排水処理施設がみら

クチンの効果により病気の発生が抑えられれば抗生物れるようになってきた。残餌や糞等のタンパク質を分

質の使用量も少なくなり、経費の削減が見込まれ、消解し飼育排水の COD、SS、全窒素量およびアンモニア

費者心理にも合致することから、ワクチンの積極的な態窒素量を減らす効果が認められている。

利用および開発を願うところである。

Kumagai and Nawate

27）

８．耐病系の選抜

10．おわりに

病原体に感染しても生き残る個体が存在し、一般的

さけ・ます類の場合、IPNV に感染していると IHNVには 10 世代で抵抗性を獲得した個体が優性となり生に感染しづらい 34）, サケレオウイルス（CSV）に感染す

物は耐病性を獲得するようになると言われている。魚

ると IHNV に感染しづらい 35）など、ウイルス間相互作類でも主要養殖魚種を対象に選抜育種が行われている

用（インターフェロン）を示唆する報告があり、dsRNAが、被害の大きいウイルス病では IHN のように魚は耐である Poly（I:C）を用いる手法が検討されている 36 ～ 38）。

病化しているが、ウイルスの変異が早く耐病性の獲得

また、前述の IHNV 耐性クローンニジマスの選抜 29）やには至っていないものもある 28）。現在まで、IHNV に抵

信州サーモン等異質 3 倍体の利用 32）等、耐病種の開発

抗性のあるギンザケとニジマスとの異種間交配によりが検討されている。さらに、ギンザケ、シロサケ、カラ

感受性の低いギンザケの性質を受け継いだニジマスのフトマス、アユおよびカジカから IHNV が分離され、

31）

選抜や IHN 抵抗性を示すクローンニジマスの選抜 、サクラマス（ヤマベ）、ギンザケ、ニジマスから OMV

ニジマス 4 倍体とブラウントラウトを掛け合わせが分離される等、感受性の異なる複数魚種同時飼育に

OMV に抵抗性のある信州サーモンの作出 、さらによる問題も考慮する必要がある。ウイルスのベクター

リンホシスチス病耐病性遺伝子座をマーカーに選抜しあるいはリザーバーの存在も明らかになりつつあり、たヒラメ、ホワイトスポット病抵抗性ウシエビの樹立

飼育環境あるいは河川・海洋環境での病原体の生態学などが報告されている。

的研究をより進める必要がある。

32）

同じ増養殖現場でも、施設の形態や規模の違いで採９．ワクチン開発の現状

られる対策が異なり、また海面等をそのまま利用する

現在市販されているワクチンは、投与方法により浸場合は、ビブリオ病のように水温の上昇により病原体

漬ワクチン、経口ワクチンおよび注射ワクチンに大別が出現する前に出荷する、あるいはワクチンを利用すされる。従来は細菌性疾病に対する浸漬および経口ワる以外に現実的な対処法がない。したがって、今後新クチンが主であったが、マダイイリドウイルス病や連たな病原微生物に水産業が脅かされないためにも、国鎖球菌症、類結節症に対する注射ワクチンが開発さ

内未侵入の疾病に対する防疫体制を整えると共に、国れ、3 種混合ワクチンも市販され、高い予防効果が得

内でも未侵入の地域に対しては同様の対策を講じる必られている。注射は最も有効な投与方法であるが、さ要があると考える。

日本水産資源保護協会◆季報

20

参考文献

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21

平成 28 年冬号

（公社）日本水産資源保護協会は以下の規格の認証（認定）機関として認められています。
生産情報公表 JAS 規格：「日本農林規格」（農林物資の規格化及び品質表示の適正化に関する法律に基づく規格）
食品の生産情報（誰が、どこで、どのように生産したか）を消費者に提供する仕組みとして、「生産情報公表 JAS 規格」を制定しています。
JAS 規格制度は、JAS 規格を満たしていることを確認した製品に JASマークを付けることができる制度です。
国（農林水産大臣）が制定。
MELJapan：『マリン・エコラベル・ジャパン』（Marine Eco-Label Japan）
FAO（国際連合食糧農業機関：Food and Agriculture Organization of theUnited Nations）の持続可能な漁業の認証のガイドラインに基づき、ISO 認証の仕組みに沿った認証制度です。
＊
スキームオーナー「一般社団法人 大日本水産会」＊

規格とその認証の仕組みを所有し、運営・維持する主体

AEL：『養殖エコラベル』（Aquaculture Eco-Label）
持続可能な養殖業の発展に資するため、FAO の養殖認証に関する技
術的ガイドラインに基づき、ISO 認証の仕組みに沿った認証制度です。
スキームオーナー「一般社団法人 日本食育者協会」● お知らせ ●「（公社）日本水産資源保護協会・受託検査について」
当協会では、以下の検査を受託しています。検査の申し込み・詳細は下記までお問い合わせ下さい。
●検査内容
・コイヘルペスウイルス（KHV）PCR 検査
・コイ科魚類特定疾病検査（KHV およびコイ春ウイルス血症（SVC））
・中国向け輸出錦鯉検査
・ヒラメのクドア・セプテンプンクタータ検査
・カナダ向け輸出餌用マサバの目視検査
・ロシア向け輸出水産食品魚病検査（活魚介類検査）・中国向け輸出活水産物検査（目視検査）●検査方法
農林水産省「特定疾病等対策ガイドライン」、国際獣疫事務局（OIE）監修の疾病診断マニュアルなどに準拠した方法を用います。検査結果は日本語表記あるいは日英文併記の結果報告書を発行します。
●受託検査に関するお問い合わせ・資料請求公益社団法人  日本水産資源保護協会  受託検査担当
TEL：03―6680―4277 FAX：03―6680―4128
E-mail：kensa-jfrca@mbs.sphere.ne.jp
ホームページ：http://www.fish-jfrca.jp/
日本水産資源保護協会◆季報

22

JAPAN F I S H E RI E S R ES OURC E C O NSE RVATIO N ASSO CI ATIO N

平成 28 年 2 月 5 日発行──────────────────────
発行 ── 公益社団法人 日本水産資源保護協会●連絡先〒104−0044
東京都中央区明石町1−1
東和明石ビル5FTEL 03(6680)4277
FAX 03(6680)4128【振替口座】00120−8−57297

企画・編集 ─ 公益社団法人 日本水産資源保護協会
制作・印刷 ─ 株式会社 生物研究社