ISSN 2186−4918
CODEN:OSSHEN

岡山大学
資源植物科学研究所報告（Annual Report 2022）− 第30巻 −岡山大学資源植物科学研究所
Institute of Plant Science and Resources
Okayama University

表紙の写真：上：令和３年（2021年）の研究所の全景
下：昭和30年（1955年）頃の研究所の全景

目

次 （Contents）

研究活動（Research Activity）
植物ストレス科学共同研究コア（Research Core for Plant Stress Science）
大気環境ストレスユニット（Atmospheric Stress Unit）
光環境適応研究グループ（Plant Light Acclimation Research Group）
環境応答機構研究グループ（Group of Environmental Response Systems）
環境機能分子開発グループ（Group of Functional Biomolecular Discovery）
土壌環境ストレスユニット（Soil Stress Unit）
植物ストレス学グループ（Group of Plant Stress Physiology）
植物分子生理学グループ（Group of Plant Molecular Physiology）
環境生物ストレスユニット（Biotic Stress Unit）
植物・微生物相互作用グループ（Group of Plant-Microbe Interactions）
植物・昆虫間相互作用グループ（Group of Plant-Insect Interactions）
植物免疫デザイングループ（Plant Immune Design Group）
植物環境微生物学グループ（Group of Plant Environmental Microbiology）
大麦・野生植物資源研究センター（Barley and Wild Plant Resource Center）
遺伝資源ユニット（Genetic Resources Unit）
ゲノム多様性グループ（Group of Genome Diversity）
野生植物グループ（Group of Wild Plant Science）
ゲノム育種ユニット（Applied Genomics Unit）
遺伝資源機能解析グループ（Group of Genetic Resources and Functions）
統合ゲノム育種グループ（Group of Integrated Genomic Breeding）
次世代作物共同研究コア（Research Core for Future Crops）
作物デザイン研究チーム（Crop Design Research Team）
フィールドフローラ研究チーム（Field Flora Research Team）
作物イノベーティブデザイン研究チーム（Crop Innovative Design Research Team）
作物・環境デザイン研究チーム（Crop x Environment Design Research Team）
RECTOR プログラム（RECTOR Program）

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構成員
（Member）
出版物リスト（List of Publication）
国際会議およびシンポジウム（List of International Conferences and Symposia）
講演およびシンポジウム発表（List of Domestic Conferences and Symposia）
研究所員が主催したシンポジウム等（List of Symposium Superintended by the Member of Institute）
学会賞等（Awards）
共同研究リスト（共同利用・共同研究拠点事業）（List of Joint Projects at the Joint Usage/ Research Center）
拠点事業以外の共同研究（国内／国際）（List of Collaborations besides the Joint Projects at the Joint Usage/
Research Center（Domestic/ International））

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研究活動 (Research Activity)
大気環境ストレスユニット
光環境適応研究グループ(Atmospheric Stress Unit)
Plant Light Acclimation Research Group

本グループでは、光合成機能を担うオルガネラである葉緑体（色素体）の分化と維持の分子機構に注目し、環境ス
トレス下での葉緑体の機能解析ならびに色素体の多面的な機能について様々な手法を用いて研究を行っている。

Our group has been studying plant adaptation toenvironmental stresses at the molecular level. Especially,
we have been focusing on chloroplasts that participate in
the energy transfer systems of photosynthesis.

１．光化学系 II タンパク質の機能維持に関する研究
光化学系 II（PSII）の迅速な分解から始まる修復機構は光合成の維持に重要である。D1 を含む PSII 反応中心タン
パク質のリン酸化が、複合体の形成と D1 分解に関わることが示唆されている。我々は PSII を中心とした、チラコ
イド膜タンパク質のリン酸化を Phos-tag により検出する方法を確立した。また、D1 分解の主要プロテアーゼである FtsH と関連した D1 の酸化修飾に着目した解析も進めている。

1.	Studies in the post-translational protein modification of
Photosystem II
A major target site of photo-damage is D1 protein
in Photosystem II (PSII), and rapid degradation of D1
is prerequisite for maintaining photosynthesis. Posttranslational modification (PTM) of amino acid residues
in the PSII, such as phosphor ylation in D1, is known
to play critical roles. We investigate phosphor ylation ofproteins in thylakoid membranes, using the Phos-tag-based
electrophoresis. We also focus on another type of PTM,
oxidation of tryptophan residues in PSII, which correlateswith D1 degradation mediated by FtsH protease.

２．ステイグリーンと作物生産性の向上に関する解析
植物において、光合成能が持続するステイグリーン形質は農業上有用な形質になり得る。我々はソルガム（Sorghum
bicolor）の 2 系統（NOG 及び BTx623）から作出した組換え自植系統を用いて QTL 解析を進めており、新規なステイグリーン遺伝子の同定及びステイグリーンに関する分子機構の解明を行っている。

2.	Q uantitative trait locus (QTL) analysis of stay-green
phenotype in sorghum
Stay-green is an important agronomic trait for plants,
possibly leading to higher yield and biomass. Currently,
we are trying to identify new QTLs of sorghum stay-green
by using 252 recombinant inbred lines (RILs), whichwere obtained from a cross between a stay-green parent(BTx623) and a faster senescing parent (NOG).

３．オルガネラ DNA に関する研究
葉緑体に存在する葉緑体 DNA は、葉の老化初期に分解される。我々が花粉において同定したオルガネラ DNA 分
解酵素は老化葉においても発現しており、老化葉でも機能していることが予想された。現在、老化葉での葉緑体
DNA 分解が、新たな養分転流に寄与する可能性について解析を進めている。

3.	Molecular mechanism of organellar DNA degradation
during plant senescence
In plant cells, mitochondria and plastids contain theirown genomes. Despite their limited genetic capacity, these
multicopy organelle genomes account for a substantial
fraction of total cellular DNA, raising the question ofwhether and how organelle DNA quantity is controlled
spatially or temporally. Now, we are studying the organelle
DNA degradation in leaves during senescence using
Arabidopsis mutants.

４．澱粉粒の形状に異常を示す突然変異体の単離とその利用植物において合成された澱粉は、我々の主食としてだけでなく、様々な加工製品としても利用されている。澱粉は、細胞内では不溶性の粒子である澱粉粒を形成する。澱粉粒の形状が変化した突然変異体には、その澱粉特性が変化しているものが存在している。我々は、澱粉粒の形状に異常を示す突然変異体のスクリーニングをオオムギとイネを用いて行い、新規の澱粉特性を持つ系統の作出を進めている。

4.	I solation and use of mutants with various shapes ofstarch grains
Starch synthesized in plants is used not only as our staple
food, but also as processed products such as saccharified
products, food additives, and industrial applications.
Starch forms starch grains, which are insoluble particles
inside cells. Mutants developing starch grains with alteredshapes sometimes shows a dif ferent starch proper ties
compared to the wild type. We are trying to isolate mutants
showing various shapes of starch grains to create breeding
materials with a broad range of starch properties.
5.	S tudies for the chloroplast membrane-maintaining
protein VIPP1
VIPP1 protein is widely found through photosynthesis
organisms and known to be required for maintaining
chloroplast membranes. To understand the mechanismsof the action of VIPP1, we are currently analyzing its noncanonical GTP/ATPase activity and high-ordered oligomer
structure. Based on cr yo-electron microscopic analyses,
we found that the structure of VIPP1 closely resembled
ESCRT-III, the membrane remodeling protein in animals
and yeasts, indicating the importance of VIPP1/ESCRT-III
machineries over the species.

５．植物の光合成と環境耐性を支えるタンパク質 VIPP1の研究
VIPP1 は植物や藻類に広く見出されるタンパク質で、葉緑体を形作る膜（チラコイド膜、包膜）の機能維持に重要である。そのメカニズムの解明を目指し、我々はこのタン
パク質の非典型 GTP/ATPase 活性と高次多量体構造に注目して解析を進めている。ドイツのグループとの共同研究による電子顕微鏡解析から、VIPP1 の立体構造は動物や酵母で生体膜の修復に関わる ESCRT-III と酷似しており、以前考えられていた以上に動植物の枠を越えて重要な機能を担っていることが明らかになった。

6.	Study on the regulatory mechanism of photosynthetic
electron transport
PSI cyclic electron transpor t is impor tant forphotosynthesis and induction of photopr otection
mechanisms. Analysis of Arabidopsis mutants showedthat the regulation of cyclic electron transport activity isrequired for the efficient activation of the carbon fixation
reactions. To clarify the regulator y mechanism of cyclic
electron transpor t, we also analyze PGR5 and PGRL1
involved in this process.

６．光合成電子伝達の制御に関する研究
PSI サイクリック電子伝達は光合成と光ストレス防御機
構の誘導に重要である。シロイヌナズナの突然変異株を用いた解析からサイクリック電子伝達の活性制御が炭酸固定反応の効率的な活性化に必要であることを明らかにした。またその制御機構を明らかにするために電子伝達経路に関わる PGR5 と PGRL1 の解析を進めている。

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環境応答機構研究グループ

Group of Environmental Response Systems

本グループでは、植物の非生物的ストレスに対する応答について、遺伝子レベルから個体レベルまで、広くシステ
ムを理解することを目指して研究を行っている。特に、植物ホルモン応答機構に着目し、生理学、分子生物学、分子遺伝学的手法により解析を行っている。今年度の研究成果の一部は以下の通りである。

Our research aim is to understand the molecular systemof the response to abiotic stress in plants at the levels fromgene expression to individual behavior. We are mainlyinterested in the plant hormone response system and havebeen analyzing the system using physiological, molecularbiological and molecular genetic approaches. Our mainachievements in 2022 are described below.

１．鉄欠乏応答に関与する新規短鎖ペプチドの解析
鉄欠乏応答に関与する短鎖ペプチド FEP1/IMA3 の生理機能の解明を目的に、FEP1 機能欠損株と FEP1 発現誘導株を用いた網羅的転写物解析を行った。その結果、FEP1
は維管束系組織で活性のある鉄欠乏応答遺伝子の発現に関わることが明らかとなった。今後、分子レベルの機能解析を推進する。また、ahg2-1 の恒常的鉄欠乏応答の抑圧変異 ags2 の解析を進め、これが ahg2-1 変異で蓄積される polyA 付加ミトコンドリア mRNA には影響しない一方、
少なくとも一部のミトコンドリア転写物のスプライシン
グパターンに影響することを明らかにした。今後、AGS2の生理機能を明らかにしていく。

1.	A nalysis of novel shor t peptide involved in irondeficiency response
To understand the physiological function of a shor t
peptide FEP1/IMA3 involved in the iron-deficiency
response in Arabidopsis, we performed RNA sequence
analysis using the fep1 defective mutant and FEP1
inducible lines. Analysis of transcriptome data revealed
that FEP1 is implicated in the expression of iron deficiency
responsive genes active in the vascular tissue. An ags2
mutation that suppresses the iron deficiency response ofahg2-1 did not affect the polyadenylation of mitochondrialmRNA but affected the splicing pattern of some of them.
We will be analyzing the molecular function of FEP1 and
AGS2 further.

２．オオムギ出穂期予測モデル構築による作物デザイン技術基盤の開発ライフコースデータから農業形質予測モデルを構築し、最適遺伝要因をデザインする技術開発を進めている。圃場
オオムギの一斉ホルモン分析から、各種ホルモンの動態と成長度合いや環境要因への応答との関連について解析を行った。その結果、野外環境において、気温上昇に伴う成長や防御応答等に伴う、これまであまり報告がないホルモン変動が認められた。今後、人工的環境下で再現実験を行う予定である。

2.	Establishment of crop design technology using a model
to predict agronomical traits
We are conducting a research project to establish aprocess to build a model to predict agronomical traits using
the flowering regulation of barley as a research subject. We
determined the life course plant hormone profile of fieldgrown barley. Detailed analysis of these data revealed thatmost plant hormones fluctuate with the growth process orenvironmental stress responses. In addition, we found thatsome hormones have additional physiological functions
besides their known functions in the field.

３．トマトおよびシロイヌナズナの気孔閉口運動におけるアニオンチャネルの役割の解明
気孔閉口において、孔辺細胞からのアニオン放出は重要である。今年度は、アブシシン酸およびリンゴ酸による気孔閉口誘導におけるアニオンチャネルの関与について、ト
マトおよびシロイヌナズナの孔辺細胞型 ALMT アニオン
チャネル変異体を解析した。このアニオンチャネルは両植物においてリンゴ酸誘導気孔閉口に関わる一方、アブシシン酸誘導気孔閉口では両植物で役割が異なることが明らかになった。

3.	A nalysis of the roles of anion channels in stomatalclosure in tomato and Arabidopsis
Anion ef flux is a critical event in stomatal closure.
This year we analyzed the involvement of guard cell type
ALMT anion channels in abscisic acid- and malate-induced
stomatal closure in tomato and Arabidopsis. We revealed
that the anion channels play a similar role in malateinduced stomatal closure in tomato and Arabidopsis. On
the other hand, its role in abscisic acid-induced closure
was shown to be divergent from each other.

４．ゼニゴケ DNA 脱メチル化酵素の機能解析
ゼニゴケの生活環において、DNA メチル化がゲノムワイドに変化していることが示唆されている。我々はゼニゴ
ケ生殖過程における DNA 脱メチル化酵素の機能を解析するため、DNA 脱メチル化酵素変異体を作成し、表現型解析を行った。その結果、胞子の形成や発芽に影響を与えることから、ゼニゴケの初期発生過程に DNA 脱メチル化が重要な機能を果たしていると考えられた。

4. Functional analysis of DNA demethylase in Marchantia
Genome-wide DNA methylation changes weresuggested during the liverwort Marchantia polymorpha life
cycle. We focused on the function of DNA demethylase in
Marchantia and analyzed their function using Marchantia
DNA demethylase mutants. The mutants showed defects
in sporing and spore germination. Therefore, DNA
demethylase was suggested to be required in the early
development process in Marchantia.

2

環境機能分子開発グループ

Group of Functional Biomolecular Discovery

本グループでは、環境ストレスに対する植物の耐性獲得に関与する酵素、タンパク質、発現制御因子の機能について生化学的分子生物学的手法を用いて解析し、劣悪環境で生育可能な作物の開発を目指している。今年度の研究成果の一部は以下の通りである。

Our group has elucidated the function of enzymes,
proteins, and gene regulation factors associated withthe stress tolerance of plant cells using biochemical andmolecular biological techniques, and their application
to development of stress-tolerant plants. Our mainachievements in 2022 are described below.

１．光環境撹乱による作物の極早生化と花成制御関連遺伝
子の発現
宇宙環境に適した作物の開発や十分な食料を迅速に宇宙で供給するには、作物の生育期間を短縮することが求められる。大麦 6 品種を発芽後に温度一定条件下で赤色光（波長 660nm）を補光し連続照射したところ、蛍光灯連続照射下では 50 日以内に止め葉が出現しない大麦 3 品種で止め葉が 50 日以内に出現し、他の 3 品種でも止め葉出現が早まった。遠赤色光（波長 730nm）を補光し連続照射して栽培したところ、大麦 6 品種全てが発芽後 30 日以内に止め葉が出現した。日長や春化に関与するオオムギ相同性遺伝子（VRN1, VRN2, CO1, CO2, Ppd-H1）について遺伝
子発現量の経時的変化をリアルタイム PCR 法により解析したところ、遠赤色光補光連続照射で Ppd-H1 遺伝子の発現ピークが FT1 遺伝子の発現ピークより約 5 日前に出現するが、赤色光補光連続照射では VRN1 遺伝子の発現ピー
クが FT1 遺伝子の発現ピークより約 5 日前に出現した。

1.	Change to super early-ripening barley and expressionof flowering-control genes by disturbance of lighting
condition
It is necessary to shorten the growing period of crops
to develop crops suitable for the space environment and to
supply sufficient food quickly in space. After germination,
6 barley varieties were continuously ir radiated withfluorescent light and red light (660 nm) under constanttemperature. The flag leaves appeared within 50 daysin the three barley varieties that did not appear the flag
leaves within 50 days under continuous irradiation withfluorescent light. When cultivated continuously irradiatedwith fluorescent light and far-red light (730 nm), the flag
leaves appeared within 30 days after germination of all 6barley varieties. The fertility of the three varieties, whichbecame 100% sterile under continuous irradiation withfluorescent light, was restored by the addition of red lightor far-red light irradiation. Time course of the expression
levels of barley homologous genes (VRN1, VRN2, CO1,
CO2, Ppd-H1) related to photoperiod and vernalization
were analyzed by real-time PCR. The expression peak of
Ppd-H1 gene appeared about 5 days before the expression
peak of the FT1 gene under continuous irradiation withfluorescent light and far-red light, but the expression
peak of the VRN1 gene appeared about 5 days before
the expression peak of the FT1 gene under continuous
irradiation with fluorescent light and red light.

２．コムギの種子休眠性に及ぼす R 遺伝子の影響
コムギの種子休眠性は種子色と深くかかわっており、赤粒系統は白粒系統に比べて休眠性が高いことが知られている。プロアントシアニジンなどの赤色系色素は種皮に蓄積され、その生合成は R 遺伝子（Tamyb10）により制御される。しかしながら、R 遺伝子と休眠性の関係には未だ不明な点が多い。本研究では、白粒系統である Fielderに Tamyb10 を導入した形質転換体を作製し、開花後 30 日の種子におけるホルモン含量と遺伝子発現を原品種である Fielder と比較した。形質転換体では種子が赤粒となり、休眠性は低下していたが、植物ホルモン含量に関しては両系統間に違いは認められなかった。しかし、形質転換体では複数の遺伝子の発現が変化しており、これら遺伝子は新規の種子休眠関連遺伝子であると考えられた。これら遺伝子の一つである TaLTP2.128 は non-specific lipid transfer
proteins（nsLTPs）ファミリーに属し、赤粒系統に比べて白粒系統においてその発現は高かった。TaLTP2.128 はイ
ネの低温発芽性を制御する OsHyPRP5（qLTG3-1）と相同性を示した。TaLTP2.128 の発現は吸水時の種子において上昇したが、発現の上昇レベルは他の白粒系統でも高かった。また、このような急激な発現上昇は、非休眠状態の赤粒系統においても認められた。TaLTP2.128 は発芽の早い時期に発現することから、休眠を解除し、発芽を引き起こ
す起点となる可能性がある。

2. Effects of R gene on seed dormancy in wheat
Grain dormancy of wheat is closely associated withgrain color; red-grained lines show higher dormancy thanwhite-grained line. Red pigments are accumulated in testa
and the production is regulated by R-1, Tamyb10 gene.
However, the relation between grain color and dormancy
is still unknown. In this study, we generated a Tamyb10
induced transgenic red-grained line and compared plant
hormones contents and gene expression of embryos of 30days after pollination (DAP) grains with an original whitegrained line. No differences were obser ved on contentsof plant hormones, but several genes were differentiallyexpressed among these lines and thought to be candidates
for novel dormancy-related genes. One of the genes,
TaLTP2.128, is a member of non-specific lipid transfer
proteins (nsLTPs) and it was expressed higher in whitegrains than red grains. A putative amino acid sequence ofthe gene showed similarity to that of OsHyPRP5 (qLTG3-1)
which controls low-temperature germinability. Expressionof TaLTP2.128 was increased by grain imbibition, andthe increasing levels were higher in not only otherwhite-grained lines, but also non-dormant red-grainedlines. TaLTP2.128 was expressed at quite early stage ofgermination and the results indicated that this gene may
act a role as a trigger of a transition of dormancy release togermination.

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土壌環境ストレスユニット
植物ストレス学グループ(Soil Stress Unit)
Group of Plant Stress Physiology

本グループでは植物の必須元素、有用元素及び有害元素の吸収・集積機構、ミネラルストレスに対する植物の応答
反応や耐性機構について個体レベルから遺伝子レベルまで研究を行っている。今年度の主な研究成果は以下の通りである。

Our group has been analyzing the mechanisms of
uptake and accumulation of essential, beneficial andtoxic minerals, and the mechanisms of the response andtolerance of plants to mineral stresses at various levels
from intact plants to genes. Our main achievements in 2022
are described below.

１．イネのホウ素吸収に関与する輸送体の制御機構
ホウ素は植物の生育に欠かせない必須元素であるが、不足と過剰の幅が狭いため、環境中のホウ素濃度の変化に素早く対応する必要がある。イネのホウ素吸収に必要な二つの輸送体 Lsi1 と OsBOR1 のホウ素濃度変化への応答機構を調べた結果、Lsi1 は環境中のホウ素濃度変化に応答しなかったが、OsBOR1 は高濃度のホウ素に対して遺伝子転写レベルではなく、タンパク質が素早く分解されることがわかった。しかも、シロイヌナズナとは異なり、高ホウ
素濃度による OsBOR1 の分解はクラスリン非依存性経路
を介している。

1.	Regulatory mechanism of transporters involved in boron
uptake in rice
Boron (B) is an essential element for plants, but therange between deficiency and excess is ver y narrow.
Therefore, plants need to cope with fluctuations of B in thesoil. We investigated the response of two transporters (Lsi1and OsBOR1) involved in B uptake in rice and found thatLsi1 did not respond to the changes in B concentrations.
However, OsBOR1 responded to high B at the protein
level, but not at the transcriptional level. OsBOR1 is
immediately degraded in response to high B. Furthermore,unlike Arabidopsis, the degradation is mediated by the
Clathrin-independent pathway.

２．イネのケイ酸の導管液へのローディングに関与する輸送体の同定
イネの安定多収に必要なケイ素について導管への積み込み（ローディング）に関与する輸送体 Lsi3 を同定した。
Lsi3 は根の内鞘細胞に局在し、極性局在を示さない。また
Lsi3 遺伝子は主に根の基部に発現し、ケイ酸の供給によって発現が抑えられた。Lsi3 を破壊すると、導管へのケイ酸のローディングが 20％程度減少した。これは数理モデ
リングの結果と一致していた。

2.	Identification of a transporter involved in xylem loadingof silicon in rice
We identified a transpor ter (Lsi3) involved in xylem
loading of silicon (Si), which is required for high andstable production of rice. Lsi3 is localized at the root
pericycle cells, but does not show polar localization. Lsi3
gene is mainly expressed in the root mature region andits expression is down-regulated by Si supply. Knockout of
this gene resulted in about 20% decrease of Si in the xylem
sap, which is consistent with the mathematic modelling
result.

３．イネ低カドミウム集積機構の解明
イネのカドミウム集積機構を明らかにするために、カド
ミウム集積が低い品種 Pokkali に着目して、その低集積に関わる仕組みを調べた。様々な手法で関連遺伝子を同定した結果、カドミウムとマンガンの輸送体として知られている OsNramp5 遺伝子が Pokkali で重複していることを明らかにした。この遺伝子の重複はカドミウムとマンガンの根細胞内への取り込みを増加させるが、地上部へのカドミウ
ムの転流をマンガンが競合して阻害し、地上部へのカドミ
ウムの集積が減少することを明らかにした。またこの遺伝子を繰り返し交配でコシヒカリに導入し、収量や食味に影響を与えず、精米中のカドミウムのみが 6 割近く減少する系統の作出に成功した。

3.	Molecular mechanism of low cadmium accumulation inrice
To understand the mechanisms involved in low cadmium(Cd) accumulation in rice, we mapped the responsible
gene using a low Cd-accumulating rice cultivar, Pokkali.
We found that a gene (OsNramp5) encoding the Mn/Cdtransporter is duplicated in this cultivar. This duplication
increased the uptake of both Cd and Mn into the root
cells, but decreased Cd translocation to the shoots due
to competition between Cd and Mn. Through multiple
backcrosses with an elite rice cultivar, Koshihikari, we
succeeded in breeding a line with low Cd accumulation,
but without any penalty in yield and eating quality.

４．オオムギにおけるリン酸分配機構の解明
オオムギにおいて吸収されたリンの 6 割以上は最終的に種子へ転流されるが、種子へのリンの転流に関する分子機構はまだ不明である。オオムギの節で高発現する新規リン酸輸送体 HvSPDT の機能を解析したところ、HvSPDT は節の肥大維管束と分散維管束の木部と篩部に発現していた。この遺伝子を破壊すると、種子へのリンの転流が大幅に減少した。また種子が小さくなり、収量が劇的に低下した。オオムギ節で発現する HvSPDT は種子へのリン酸の転流に重要な役割を果たしている。

4.	M o l e c u l a r m e c h a n i s m s f o r t h e d i s t r i b u t i o n o fphosphorus to the grain in barley
Approximately 60% of total phosphorus (P) taken up is
finally delivered to the grains of barley, but the mechanism
underlying the distribution of P to the grains is unknown.
We functionally characterized a P transpor ter gene,
HvSPDT, which is highly expressed in the node. HvSPDTis expressed in both the xylem and phloem regions ofenlarged- and diffuse-vascular bundles. Knockout of thisgene significantly reduced P distribution to the grains. The
grain size was also decreased, indicating the importantrole of HvSPDT in loading P to the grains in barley.

4Group of Plant Molecular Physiology

植物分子生理学グループ
本グループでは環境ストレスに対する植物の応答と適応機構を分子、細胞、生理学的に研究している。今年度は原形質膜型のイオン輸送性アクアポリン、水輸送活性の異なる液胞膜型のアクアポリン、気孔を構成する孔辺細胞の「気孔タイプ ALMT」のリンゴ酸輸送の機能と構造についての研究成果を報告する。

Our research has been focusing on the molecular,
cellular and physiological response and adaptation
mechanisms of plants under environmental stresses. We
report ion conduction in the plasma membrane and water
conducting aquaporins in the tonoplast. We also report therelationship of transport function and structure regarding
guard-cell-type ALMT family malate transporters.

１．アクアポリンの機能と機構
イオン輸送性アクアポリンであるイネ OsPIP2;4 とオオ
ムギ HvPIP2;8 は、Na+ および K+ を輸送するとともに水も輸送する。両アクアポリン分子種ともに、水輸送経路にアミノ酸変異を導入して水輸送活性を喪失させてもイオン輸送活性は維持されたことから、水とイオンの輸送経路は異なるものであることが示された。水輸送経路である単量体の孔とは別のイオン輸送経路が、アクアポリンが４量体を形成する際に形成されるとの仮説がたてられ、この仮説的経路にそってアミノ酸変異を導入して実証実験を進めている。
シロイヌナズナの液胞膜型アクアポリン AtTIP3 サブファ
ミリーには、水輸送活性の異なる２種類のホモログ AtTIP3;1と AtTIP3;2 が存在している。AtTIP3;1 と AtTIP3;2 のアミノ酸配列と構造を比較し、アミノ酸置換をした置換型
AtTIP3 を解析することにより、その水透過能力を調節する領域を同定した。

1.	Molecular mechanisms and functions of aquaporins
The ion-conducting aquaporins rice OsPIP2;4 and barley
HvPIP2;8 transport Na+ and K+ as well as water. In both
aquaporins, amino acid mutations in the water transport
pathway resulted in loss of water transport activity, but ion
transport activity was maintained, indicating that the waterand ion transport pathways are distinct. We hypothesizedthat the ion transport pathway is formed when aquaporins
form tetramers dif ferently from a monomer pore forthe water transpor t pathway. We are now testing thishypothesis by introducing amino acid mutations along thishypothetical pathway.
Arabidopsis tonoplast intrinsic protein3, AtTIP3,
subfamily contains two homologs, AtTIP3;1 and AtTIP3;2,
which showed clear dif ferences in water permeability.
We analyzed the water permeability of some AtTIP3;1
chimeric mutants that had amino acid sequences replacedwith those of AtTIP3;2, and identified two regions that
controlled the water transport in AtTIP3s.

２．気孔タイプ ALMT の輸送機能の解析
シロイヌナズナおよびトマトの ALMT ファミリー遺伝
子 AtALMT12 と SlALMT11 は、アポプラスト側のリンゴ酸により誘導される気孔閉口に関与する。今回わたした
ちは、これら２つの気孔タイプ ALMT の輸送機能特性を、
アフリカツメガエル卵母細胞を用いた電気生理学的手法により調査した。SlALMT11 と AtALMT12 は外液のリン
ゴ酸、フマル酸そしてクエン酸に依存した「ベル型」の電流・電圧パターンを示した。そして両 ALMT タンパク質
はリンゴ酸、フマル酸、コハク酸を輸送するがクエン酸は放出しないことを明らかにした。そのため、気孔タイ
プ ALMT は外液の有機酸により活性化されるジカルボン酸輸送体であることが示された。さらに、タンパク質の C末端に共通する酸性アミノ酸（アスパラギン酸、グルタミン酸）を欠損することで、SlALMT11 と AtALMT12 にみられた「ベル型」の電流・電圧パターンが消失した。このことから、シロイヌナズナとトマトの気孔タイプ ALMT
チャネルの C 末端の酸性アミノ酸は、膜電位センサーとして機能することが示唆された。

2.	Functional analyses of guard-cell-type ALMT channels.
The or tholog genes of a wheat ALMT1, the guardcell-type ALMT genes: AtALMT12 and SlALMT11 are
involved in stomatal closure induced by apoplast malate
in tomato and Arabidopsis. In this study, we focused on
the electrophysiological proper ties of guard-cell-type
ALMT functions by measuring the two-electrode voltage
clamp in Xenopus oocytes. SlALMT11 and AtALMT12
exhibited characteristic bell-shaped cur rent-voltage
patterns dependent on extracellular malate, fumarate, andcitrate. Both ALMTs could transport malate, fumarate, andsuccinate, but not citrate. Therefore, the guard-cell-type
ALMTs might be dicarboxylic anion channels activatedby extracellular organic acids. Moreover, the truncationof acidic amino acids, Asp or Glu, from the C-terminalend of SlALMT11 or AtALMT12 led to the disappearanceof the bell-shaped current-voltage patterns. This finding
suggested that guard-cell-type ALMT channels in both
Arabidopsis and tomato require an acidic amino acid in the
C-terminus as a candidate voltage sensor.

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環境生物ストレスユニット
植物・微生物相互作用グループ(Biotic Stress Unit)
Group of Plant-Microbe Interactions

本グループでは、ウイルスを主役として宿主へ有害なあるいは有益な影響を及ぼすいくつかの系を解析すること
で、植物・微生物間相互作用の分子、細胞、個体レベルでの理解を目指している。以下に本年の成果を記す。

Plant growth is influenced by various vir uses andmicroorganisms. Our group explores, at molecular, cellularand individual levels, the plant/microbe interplays ofseveral selected pathosystems in which viruses as main
players exert beneficial or harmful effects on plants.

１．キャプシドレス 1 本鎖 RNA ウイルス・2 本鎖 RNA ウ
イルス・植物病原糸状菌間の複雑な 3 者間相互作用
子のう菌（日本産白紋羽病菌）に感染するキャプシドレ
スプラス 1 本鎖 RNA ウイルス・ヤドカリウイルス 1（YkV1、
ヤドカリウイルス科）は、無関係のキャプシド型 2 本鎖RNA ウイルス・ヤドヌシウイルス 1（YnV1、ヤドヌシウイルス科）のキャプシド粒子をハイジャックし、複製の場として転用する。一方、YkV1 は YnV1 の複製を高めることが知られている。さらに、YkV1 と異なる 3 種のヤドカ
リウイルス（YkV3、YkV4a、YkV4b）を 2018 年にスペイン産白紋羽病菌から発見している。本研究では、まずこれら 3 種ヤドカリウイルスのパートナー（YnV1 とは亜目レベルで異なる本鎖 RNA ウイルス）を同定した。YkV4a
および YkV4b はメガトティウイルス（RnMTV1、メガト
ティウイルス科）3 系統とパートナー関係を結ぶことが可能であったが、YnV1（YkV1 のパートナー）あるいは
RnMBV3（YkV3 のパートナー、メガビルナウイルス科）
存在下では複製できなかった。YkV3 も RnMBV3 以外とはパートナーシップを結ぶことはできなかった。YkV1 とは異なり、YkV4 はパートナーである RnMTV1 の蓄積量を減少させ、RnMTV1 が引き起こす宿主菌の病徴を低減させた。YkV3 は、パートナーの RnMBV3 や宿主菌へは影響を及ぼさなかった。以上の結果は、それぞれのヤドカ
リウイルス種はガブリウイルス目の非常に多様な 2 本鎖RNA ウイルスと種特異的なパートナーシップを結ぶことが証明された。また、ヤドカリウイルス／パートナーウイ
ルス／宿主菌の相互作用は、相利共生的から拮抗的関係と複雑であることが示された。

1.	Three-layered complex interactions among capsidless(+)ssRNA yadokarivir uses, dsRNA vir uses, and aphytopathogenic fungus
A capsidless (+)ssRNA virus YkV1 (a yadokarivirus,
family Yadokariviridae) highjacks the capsid of an unrelated
dsRNA virus YnV1 (proposed family “Yadonushiviridae”) ina phytopathogenic ascomycete, while YkV1 trans-enhances
YnV1 replication. Herein, we identified the dsRNA virus
par tners of three yadokariviruses (YkV3, YkV4a, andYkV4b) with genome organization different from YkV1
as being different from YnV1 at the suborder level. Their
partners were mutually interchangeable between the two
YkV4 strains (a and b) and three strains of the partner
virus RnMTV1 (proposed family “Megatotiviridae”) but
not between other combinations involving YkV1 or YkV3.
Unlike YkV1, YkV4s reduced RnMTV1 accumulation andrescued the host fungus from impaired growth induced by
RnMTV1. YkV3 exerted no apparent effect on its partner(RnMBV3, family Megabirnaviridae) or host fungus. These
revealed that while each yadokarivirus has a speciesspecific partnership with a dsRNA virus, yadokarivirusescollectively par tner extremely diverse dsRNA viruses
and show three-layered complex mutualistic/antagonistic
interactions in a fungus.
2.	D iscover y and genome characterization of a novel
closterovirus infecting wheat plants
In the 1970s, an aphid-transmitted clostero-like virus,
named wheat yellow leaf virus (WYLV), was first detected
to have infected wheat plants in the IPSR experimental
field in Kurashiki, Japan. Since then, its viral genome
sequence and occur rence in the field have not beenrepor ted. In this study, we discovered two variants ofa closterovir us tentatively named “wheat yellow leafassociated virus 1 (WYLaV1)” from yellowing leaf samplesof wheat plants in the IPSR field through RNA-seq analysis.
BLAST and phylogenetic analyses suggest that WYLaV1
represents a member of a novel species in the genus
Closterovirus (family Closteroviridae). Similar to WYLV,
WYLaV1 had aphid transmissibility and typical filamentous
virion. WYLaV1-infected wheat plants were occasionallyco-infected with barley yellow dwarf-PAV. Considering that
the IPSR field is in a relatively closed condition, WYLV
populations may have been reser ved, and thus WYLaV1
and WYLV will be potential members of the same species.
However, we are unable to verify it because the WYLV
sample in the 1970s. Our results provide the first genome
information of a closterovir us that infects wheat andpotentially other cereal crops, but further investigations
are needed to understand the impact of WYLaV1 infection
on their production.

２．コムギに感染する新規クロステロウイルスの発見とゲ
ノム解析
1970 年代に植物研圃場（倉敷市）で初めて確認された
コムギ黄葉ウイルス（WYLV）は、アブラムシが媒介する
クロステロウイルス属（Closteroviridae 科）のメンバーと考えられている。しかし、その発生状況やウイルスゲノ
ム配列に関しては不明のままであった。本研究では、植物研圃場で黄化症状を示すコムギ葉の RNA-seq 解析により、クロステロウイルスを再発見し、wheat yellow leafassociated virus 1（WYLaV1）と仮称した。配列相同性および系統解析の結果、WYLaV1 はクロステロウイルス属の新種に属することが示唆された。WYLV と同様、WYLaV1はアブラムシにより媒介されその粒子は典型的な紐状形態であり、しばしばルテオウイルス属のオオムギ黄萎ウイ
ルス PAV と共感染していた。植物研圃場は市街地の比較
的閉鎖的な環境であることから、見出された WYLaV1 は
WYLV と同種のウイルスである可能性が考えられる。以上、本研究はムギ類や穀物に感染するクロステロウイルス属の初めてのゲノム解析となるが、圃場でのコムギへ及ぼす影響などについては調査が必要である。

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Group of Plant-Insect Interactions

植物・昆虫間相互作用グループ
本グループでは、代表的な単子葉のモデル植物であり日本の主要穀物であるイネの植食性昆虫に対する防御機構の解析を行っている。2022 年に行った主要な 2 課題を以下に記す。

We are studying mechanisms of plant defense against
herbivores using rice as an important monocot model andmajor crop in Japan. Two topics investigated in 2022 arehighlighted below.

１．植食性昆虫に対するイネの防御機構におけるミネラル
元素の役割の理解
作物が土壌中のミネラルを利用できるかどうかは、作物の成長や収量に大きく影響することが知られている。しかしながら、ミネラル元素が植物の植食性昆虫に対する防御応答に影響するかどうかは不明な点も多い。私たちは昨年
までに、ケイ素（Si）が圃場で栽培したイネのバッタに対する防御に重要な役割を果たすことを見出していた。そこで現在、ケイ素の機能をより詳細に解析するために、ケ
イ素を添加または無添加条件で水耕栽培したイネを用いて、咀嚼性植食性昆虫であるクサシロキヨトウ（Mythimna
loreyi）の幼虫に対する防御応答の解析を行っている。ケ
イ素欠乏のイネを餌とした場合、幼虫がより早く成長するのに対し、ケイ素を添加したイネを餌とした場合は、昆虫の成長はほぼ完全に抑えられた。我々はケイ素が直接的に植食性昆虫に働く可能性に加え、イネが周囲へ発するシグナル産生など、なんらかの防御応答の調節にケイ素が関与する可能性を検証した。植食性昆虫による傷害を受けたイ
ネは、特定のブレンドの揮発性物質を放出することが知られており、この揮発性物質は植食性昆虫の天敵となる捕食者、寄生蜂を誘引する。解析の結果、ケイ素の添加が揮発性物質の放出に重要であることを見出した。ケイ素の有無
はイネのヘッドスペースの揮発性物質の産生量に関与するため、イネの天敵誘引を伴う間接的防御や周辺環境との相互作用にケイ素が影響する可能性が示唆された。

1.	U nderstanding the role of mineral elements in rice
defense against herbivores
Availability of minerals in soil is known to largely affectplant growth and yield of crops. However, it is not clear
if mineral elements can also affect the plant defense
responses against herbivores. In previous years, we foundthat silicon (Si) plays an important role in field-grown rice
defense against grasshoppers. To understand the role of
Si in more detail, we currently developed hydroponicallygrown rice plants supplied with Si, and plants without Si,
and examined their defense properties against larvae ofchewing herbivore, Mythimna loreyi. While Si-deficientplants allowed rapid growth of insects, Si supplementation
almost completely inhibited their growth. While Si could
directly act on herbivores, we also wanted to know if Si
could be modulating other defense responses, such asenvironmental signaling in rice. It is known that herbivoredamaged rice plants release a specific blend of volatiles
that attracts natural enemies of herbivores, predatorsand parasitoid wasps. Our current results suggest that
Si supplementation is important for volatile release.
The presence and absence of Si affected the amounts ofvolatiles in the rice headspace, which is then likely to affectthe indirect rice defense and interactions of rice with theenvironment.
2.	Further studies on insect symbiont-induced rice defense
Previously, we demonstrated that rice plants can
specifically recognize microbes contained in brownplanthopper (Nilaparvata lugens) honeydew, whichthen elicits rice innate defense against this damaging
sucking pest. We then proposed that microbes fromhoneydew could be isolated and used as a new promising
biocontrol tool in the Integrated Pest Management (IPM)systems. In order to expand the range of potentially
useful microbes from honeydew, we further investigatedthe composition of microbial symbiont communities in
N. lugens collected from several different geographicalregions in Japan. New generation sequencing (NGS)
was used to estimate a total diversity of microbes in thehoneydew, and many additional microbial strains havebeen isolated from the geographically diverse honeydew
sources. The most promising bacterial inducers of rice
defense were then used in a pilot field experiment where
rice plants were periodically sprayed with the selected
microbial cultures and damage from the field-occurringherbivores was observed throughout the cultivationseason. Although treatments of rice with microbes showedsome differential effects on rice defense in the field(including higher defense capacity), this year experiments
remained inconclusive due to a low occurrence of the
field herbivores. The experiments will be continued in
the following years to obtain more conclusive results andcontribute to IPM methods.

２．昆虫共生微生物により誘導されるイネの防御応答のさらなる研究以前に我々は、イネが吸汁性昆虫のトビイロウンカ（Nilaparvata lugens）の甘露に含まれる微生物を特異的に認識し、防御応答を誘導することを示していた。現在、我々は甘露中から単離した微生物を、総合的害虫管理（IPM）
において新たな生物的防除ツールとして利用できる可能性を考えた。有用な微生物を得るために、日本の複数の地域でトビイロウンカを採取し、甘露中の微生物を解析した。次世代シーケンス（NGS）解析により、各採取地のトビイロウンカの甘露中の微生物叢を明らかにするとともに、多くの微生物種を甘露から新たに単離することができた。イネの防御機構活性化が最も期待できる甘露中の微生物種に注目し、圃場における予備的試験として、イネに対して栽培期間中に定期的に当該微生物の培養液を散布し、植食性昆虫による加害の程度を観察した。その結果、圃場
でのイネの防御応答の促進など、イネの防御機構への影響が認められた。しかしながら、今年度の実験では圃場の植
食性昆虫の発生数が少なかったため、結論には至っていな
い。次年度も実験を継続し、最終的な結論を得ることで、総合的害虫管理技術の開発に貢献することを期待する。

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Plant Immune Design Group

植物免疫デザイングループ
我々の究極の目標は、生物的ストレスに対する抵抗性を向上させた新しい植物を設計することである。この目標を遂行するために、私たちは、植物と微生物の相互作用のメ
カニズムの解明を試みている。2022 年の主な成果は以下の通りである。

Our ultimate goal is to design new plants that can copewith biotic stresses and to improve important agronomic
traits. To accomplish this goal, we have been tr ying todecipher the mechanism of the plant-microbe interactions.
Our main achievements in 2022 are described below.

１．NLR 型免疫受容体 Pit の CC ドメインに保存された 3
つの疎水性残基は、細胞膜への局在と免疫誘導に寄与している
Nucleotide-binding leucine-rich repeat（NLR）タンパク質は、重要な細胞内免疫受容体として機能している。NLR のN 末端は、coiled-coil（CC）と Toll-interleukin 1 receptor ド
メインの 2 つに分類され、シグナル伝達や病害抵抗性において重要な役割を担っている。しかし、NLR タンパク質の N 末端がどのようにして免疫誘導に関与しているかは、
ほとんど明らかにされていない。本年度、我々は、イネの最重要妨害であるいもち病菌に対する NLR 型免疫受容体
Pit の CC ドメインが自己会合に寄与していることを明らかにした。Pit の CC ドメインには、オオムギの MLA10 とシロイヌナズナの RPM1 の 2 つの NLR 型免疫受容体でオリゴマー形成に関与することが知られている保存された 3
つの疎水性残基が存在する。興味深いことに、Pit におけるこれらの残基の機能は、MLA10 や RPM1 とは異なって
おり、3 つの疎水性残基は Pit が誘導するイネいもち病菌
に対する病害抵抗性に重要であるが、自己会合や下流のシグナル分子との結合には関与していないことを明らかにした。我々は、シロイヌナズナ NLR 型免疫受容体 ZAR1構造を用いた Pit のホモロジーモデリングにより、3 つの保存された疎水性残基の役割の解明を試み、それらが Pit
CC ドメインのα2−ヘリックスと予測される残基に位置し、細胞膜局在に関与することを見出した。今回の発見は、
NLR の活性化機構や、細胞内局在と免疫誘導の関係を理解する上で、新たな知見をもたらした。

1.	T hree conser ved hydrophobic residues in the CC
domain of Pit contribute to its plasma membrane
localization and immune induction
Nucleotide-binding leucine-rich repeat (NLR) proteinswork as crucial intracellular immune receptors. N-terminal
domains of NLRs fall into two groups, coiled-coil (CC)and Toll-interleukin 1 receptor domains, which play
critical roles in signal transduction and disease resistance.
However, the activation mechanisms of NLRs, and how
their N-termini function in immune induction, remain
largely unknown. Here, we revealed that the CC domain of
a rice NLR Pit contributes to self-association. The Pit CC
domain possesses three conserved hydrophobic residues
that are known to be involved in oligomer formation in two
NLRs, barley MLA10 and Arabidopsis RPM1. Interestingly,
the function of these residues in Pit dif fers from thatin MLA10 and RPM1. Although three hydrophobic
residues are important for Pit-induced disease resistanceagainst rice blast fungus, they do not participate in selfassociation or binding to downstream signaling molecules.
By homology modelling of Pit using the Arabidopsis
ZAR1 structure, we examined the role of three conservedhydrophobic residues and found that they are located in
the predicted α2-helix of the Pit CC domain and involvedin plasma membrane localization. Our findings provide
insight into the mechanisms of NLR activation as wellas the relationship between subcellular localization andimmune induction.

２．炭疽病菌における細胞内ステロールの輸送は植物感染に重要である
炭疽病菌は多くの植物種を宿主として壊疽病斑を引き起こす、重要な植物病原糸状菌である。本菌は宿主への侵入の際に、メラニン化した付着器と呼ばれる特徴的な感染器官を形成し、そこから貫穿糸を宿主表皮に貫入させ、宿主内に侵入する。本研究では、ウリ科植物を宿主とするウリ類炭疽病菌において、Niemann-Pick type C（NPC）タン
パク質を介した適切なステロールの輸送・分配が、付着器における貫穿糸形成に重要であることを明らかにした。蛍光顕微鏡や走査型電子顕微鏡を用いた詳細な観察から、付着器内の細胞膜にステロールが適切に分配されることで、貫穿糸形成に必要なタンパク質が適切な部位に集積することを見出した。本研究は植物病原菌の感染時において、NPC タンパク質を介したステロール輸送の仕組みを初めて示したものであり、ステロール輸送機構をターゲットとした新たな防除薬剤の開発に繋がる可能性が期待される。

2.	Intracellular sterol transport in plant infection in theanthracnose fungus, Colletotrichum orbiculare
Anthracnose caused by plant-pathogenic Colletotrichum
fungi is a serious disease that causes damage in many plant
species. During infection, Colletotrichum species developa specialized infection structure called appressorium, andpenetrate the host cuticle and epidermal cells througha narrow penetration peg produced at the bottom of theappressorium. In this study, we revealed that the steroltransport and proper distribution mediated by NiemannPick type C (NPC) proteins are critical for the formationof the penetration peg in the cucumber anthracnose
fungus, C. orbiculare. The fluorescent and transmission
electron microscope observations revealed the membrane
integrity and curvature with actin assembly formed after
proper sterol distribution to the plasma membrane in theappressorium, leading to emergence of the penetration
peg. Our results revealed the mechanism by which NPC
proteins regulate appressorium-mediated plant infection.

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植物環境微生物学グループ

Group of Plant Environmental Microbiology

本グループでは植物に共生しその生育を助けるような細菌の分離・分類や機能解析、また赤潮原因藻の生理機能やその共生細菌・ウイルスとの生物学的相互作用についての研究を行っている。今年度の研究成果の一部は以下の通りである。

Our group mainly focuses on (1) isolation, identification,and functional analysis of plant-associated growthpromoting bacteria and (2) physiological function of algal
bloom and its biological interaction with symbiotic bacteria
and viruses. Our major achievements in 2022 are described
below.

１．Methylobacterium 属細菌のランタノイド取り込み、排出に関わる因子の機能解析
Methylobacterium 属細菌は植物葉上の主要な共生細菌であり、植物が放出するメタノールを利用して生育し、植物の生育を促進する。本属細菌はカルシウム（Ca）依存とランタノイド（Ln）依存の二つのメタノール脱水素酵素（MDH）を持っている。一方で、細菌が鉄を取り込む際に利用する分子、シデロフォアは植物の鉄の取り込みにも関わっている。M. aquaticum 22A 株は Staphyloferrin B 様シ
デロフォア合成遺伝子を持っており、その破壊株は当然鉄取り込み能力を失うだけではなく、Ln の取り込み能力及び植物生育促進能も失ったことから、シデロフォアの多様な役割が示された。またペリプラズム空間で Ln を結合す
る Lanmodulin タンパク質は Ln の取り込み及び排出に関わっているが、メタノール生育や Ln 依存的 MDH の発現調節機構には関わっていないことがわかった。

1.	Functional analysis of the factors involved in lanthanide
uptake and excretion
Methylobacterium species, ubiquitous bacteria livingon the plant surface can utilize methanol emitted fromplants and promote plant growth. They have two different
methanol dehydrogenases (MDHs), which are either
calcium (Ca)-dependent or lanthanide (Ln)-dependent. On
the other hand, siderophores, iron-chelating compounds,
secreted by bacteria also promote plant growth. The M.
aquaticum strain 22A genome encodes the staphyloferrin
B gene cluster, and the gene deletion mutant lost Ln
uptake activity and plant growth promoting capacity as wellas iron uptake ability, which suggested the diverse rolesof the Methylobacterium siderophore. A periplasmic Lnbinding protein, lanmodulin, was found to be involved in
Ln uptake and excretion but not in methanol growth andLn-dependent regulation of MDHs.

２．赤潮原因藻ヘテロシグマの増殖を促進する海洋細菌の探索と、増殖促進機序の解明『赤潮』とは、植物プランクトンが異常に増殖し、海水が着色する現象を指す。赤潮は、水温、海水塩度、栄養塩
含量など、様々な要因によって誘発される。近年、これらに加え、環境細菌が赤潮発生を誘発する可能性が指摘されている。例えば、海水・底泥中の細菌による含窒素・含リン化合物の化学的変換により、植物プランクトンが N/
P を含む化合物を利用しやすくなる可能性も指摘されている。
当グループは、赤潮原因藻ヘテロシグマの増殖への促進作用を示す海洋細菌の同定を目指して、自然界で通常よりも高い細胞密度に増殖したヘテロシグマを含む海水（～
20,000 cells/mL）や同地点の底泥を採取し、200 株近い細菌を単離し、ヘテロシグマ増殖を貧栄養状態にて促進する細菌の同定を目指したスクリーニングを行なった。その結果、リン欠乏培地中でヘテロシグマや他の植物プランクト
ン増殖を促進する細菌を単離した。増殖促進機構を精査したところ、本細菌は、ヘテロシグマに貪食され、栄養源として利用されることが明らかになった。光合成を行う植物
プランクトンは、正リン酸や可溶性有機含リン化合物を利用するとともに、細菌貪食を、貧栄養条件を生き延びるために利用することは知られてきたが、細菌貪食により摂取したリン化合物を利用して増殖するという報告は例がなく、現在詳しい解析を進めている。

2.	S earch for marine bacteria that promote the growthof the bloom-causative phytoplankton, Heterosigma
akashiwo
Algal bloom refers to the phenomenon thatphytoplankton proliferate abnormally to cause water
discoloration. Bloom formation is induced by various
f a c t o r s s u c h a s w a t e r t e m p e r a t u r e , s a l i n i t y, a n deutrophication. Various environmental bacteria may also
contribute to the bloom occurrence. For example, bacteria
in seawater and bottom sediments are suggested toconvert nitrogen- and phosphorus-containing compounds
to biologically available forms for phytoplankton, thus
facilitate the growth of the organisms.
To i d e n t i f y m a r i n e b a c t e r i a t h a t p r o m o t e t h egrowth of the bloom-causative alga H. akashiwo, wecollected seawater and bottom sediment containing
the alga propagated to abnormally high cell densities,
and isolated > 200 bacterial strains. As a result, we
isolated a bacterial strain that promoted the growth ofHeterosigma and other phytoplankton in phosphorusdeficient conditions. We found that the bacterium wasphagocytosed by Heterosigma and was utilized as anutrient source. Photosynthetic phytoplankton, in general,utilize orthophosphate and soluble organic phosphorouscompounds, and also several reports demonstrated thatthey phagocytose bacteria to sur vive under oligotrophic
conditions. However, there have been no repor ts ofphytoplankton utilizing phosphorous compounds ingested
by bacterial phagocytosis for cell proliferation. We are
currently conducting detailed analysis to elucidate themechanism underlying the bloom formation.

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遺伝資源ユニット
ゲノム多様性グループ(Genetic Resources Unit)
Group of Genome Diversity

ゲノム多様性グループでは、実験系統を含む栽培オオム
ギ約 14,000 系統と野生オオムギ約 900 系統を保有し、（1）種子の増殖、収集、保存および種子配布等の系統保存事業、（2）遺伝的多様性の評価ならびに特性形質のデータベース
化、（3）ゲノム解析の諸手法を用いたオオムギ遺伝資源の機能開発に関する研究に取り組んでいる。

Our group has preser ved ca. 14,000 accessions ofcultivated barley including experimental lines and ca.
900 accessions of wild relatives. The objectives of ourresearch are 1) collection, multiplication, preservation anddistribution of barley germplasm, 2) evaluation of genetic
diversity and development of the database of genotype
and phenotype data, and 3) application of barley genetic
resources to breeding and basic research by the genome
analysis using new technologies, e.g., NGS, microarraygenotyping and genetic transformation.

１．オオムギ遺伝資源の系統保存事業
当グループは、ナショナルバイオリソースプロジェクト（NBRP）に参画し、オオムギ種子ならびにオオムギゲノ
ムリソースの配布事業を担っている。
（a）系統種子の配布と保存
当事業では、在来系統、実験系統および野生系統を含むオオムギ種子の増殖ならびに配布を行っている。ノルウェー・スバルバル世界種子貯蔵庫へのオオムギ種子預託も実施している。これらのオオムギ種子は、未来の食糧確保のために必要な品種改良の基礎となる重要な遺伝資源であり、重複保存によって長期的な食糧安全を保証することに繋がる。
（b）ゲノムリソースの配布保有するゲノムリソースは、国内外の研究者のリクエス
トに応じて分譲している。これらのリソースは、BAC ラ
イブラリーの全クローンセット、選抜用プール DNA、高密度フィルターならびに完全長 cDNA クローン、保存系
統のゲノム DNA 等が含まれている。

1.	Preservation and distribution of barley genetic resources
Our group has been taking par t in the National
BioResource Project (NBRP) and has been preserving anddistributing the barley seeds and DNA clones.
(a) Preservation and distribution of barley germplasms
We ar e multiplying and distributing the barley
germplasms including landraces, experimental lines,
and wild relatives. We are depositing barley seeds in the
Svalbard Global Seed Vault in Spitsbergen, Norway. Thesebarley seeds are important genetic resources to be utilized
as barley breeding materials for food security, and storageof duplicate samples is important.
(b) Distribution of barley genome resources
We are distributing the barley genome resources todomestic and international institutions and researchers
upon request. These resources include the complete BAC
clone sets, pooled BAC DNA for clone screening, its highdensity replica membranes, full-length cDNA clones andgenomic DNA samples from the barley accessions.

２．オオムギ遺伝資源の評価
当グループでは、オオムギ遺伝資源を用いた有用形質の原因遺伝子単離と解析を進めている。
（a）オオムギの全ゲノム解読
日本の醸造用オオムギ「はるな二条」や栽培オオムギの祖先野生種 OUH602 の全ゲノム配列を最新の塩基解読法
および整列技術を駆使して高精度に解読した。この成果によってオオムギの品種開発の加速化が期待される。
（b）亜熱帯環境におけるオオムギ栽培特性の評価
農研機構などとの共同研究によって、オオムギ遺伝資源の南西諸島での栽培特性評価に取り組み、大規模な栽培実
績のない亜熱帯気候地域での栽培にも適性を持つ遺伝資源を見出した。

2. Evaluation of barley genetic resources
Our group is working on the isolation and analysis ofgenes responsible for useful traits using barley genetic
resources.
(a) Whole genome sequencing of barley
The chromosome-scale genome assemblies of theJapanese elite malting variety ‘Haruna Nijo’ and the wild
ancestor of cultivated barley ‘OUH602’ with precision
nucleotide sequencing and alignment techniques havebeen released. This achievement is expected to facilitate
the breeding of new barley varieties.
(b) E valuation of barley cultivation characteristics insubtropical environments
In collaboration with the Kyushu-Okinawa Agricultural
Research Center, NARO and other organizations, we areworking on the evaluation of barley genetic resources forcultivation in a subtropical climate.

３．オオムギの雑種強勢に関する研究
オオムギの新規開花性変異を活用した雑種種子生産技術を開発するとともに、ゲノム編集技術による開花性変異の新規アレルの創出を進めている。これらの技術により、生育地の拡大に伴う不良環境での良質なバイオマス生産を確保し、二酸化炭素の資源化を目指している。

3. Study on hybrid vigor in barley
We are developing hybrid seed production technology
using novel flowering mutations in barley, and creating
new alleles of flowering mutations using genome editing
technology. Through these technologies, we aim to ensurehigh-quality biomass production in poor environments dueto the expansion of growing areas and to convert carbon
dioxide into resources.

４．オオムギの形質転換とゲノム編集
当グループでは、オオムギの形質転換効率に関わる遺伝子の探索やゲノム編集効率の改善に取り組んでいる。一方、ゲノム編集技術（CRISPR/Cas9 法）により、種子休
眠性遺伝子、リン輸送に関わる遺伝子、うどん粉病感染に関わる遺伝子等の改変に成功した。

4. Transformation and genome editing of barley
Our group is tr ying to find the genes related to theefficiency of genetic transformation and to improve theef ficiency of genome editing in barley. In addition, we
have succeeded in site-directed mutagenesis of barley
grain dormancy genes, phosphorus transporter gene, andpowdery mildew resistance gene by genome editing.

10Group of Wild Plant Science

野生植物グループ
本グループでは，地球上に植物の多様性が進化した仕組
みの理解を目指した研究を行っている。また，併せてこれまでに収集された野生植物の遺伝資源を保存するとともに，岡山県を中心とした絶滅危惧種の保全に関する調査研究を行っている。

Our group has been investigating the mechanistic
basis for evolution of the diversity of plant species. In
addition, by preserving resources of wild plant seeds, weare assessing and conserving endangered plant species in
Okayama Prefecture.

１．緯度に応じて異なる環境に対する植物の適応進化機構に関する研究日長や気温をはじめとする緯度に応じて変化する環境
は植物の生育に大きな影響を与える。こうした緯度に伴い変化する環境の違いに植物が適応するための仕組みを明らかにすることを目指し，北極圏から温帯の高山帯にかけて広範囲の緯度に分布する周北極 − 高山植物を材料に研究を進めている。本年度はこれまでに明らかにした「異なる緯度に生育する植物が温度や光に対する感受性の異なるフィトクロム（phyB）を持つこと」の一般性を検証することを目指し，日本列島から北極圏に分布する様々な高山植物を対象にフィトクロム遺伝子の塩基配列を解読する研究に取り組んだ。野外に生育する植物から採取したサンプルを用いた RNA-seq 解析を行うことで，ツツジ科
植物を中心に約 5 種におけるフィトクロム遺伝子の塩基配列を解読した。そして，様々な地域に由来するサンプルにおける塩基配列を比較することで，ツガザクラ属の進化においては，フィトクロムの環境感受性に関連するドメイン（PHY ドメイン）におけるアミノ酸配列の変化が生育地の緯度に関連することが明らかになった。

1.	S tudy on mechanisms of adaptation evolution along
latitude
Adaptation to environments var ying along latitude
such as photoperiod and temperature are impor tantfor regulating the plant’s life cycle and reproductive
success. To understand how plants adapt to dif ferent
environments along latitude, we are focusing on arcticalpine plants, whose distributions encompass highmountains in temperate regions and circumarctic
region. In this year, we focus on examining whether
adaptive change of thermal stability of phytochrome iscommonly applicable for evolution of plants. To this aim,
we explored polymorphisms on phytochrome genes invarious species of alpine plants. We performed RNA-seq
using plant materials grown in wild habitats and identified
nucleotide sequences of phytochrome genes in about fivespecies, especially species in Ericaceae. Using numerous
samples originating from populations located in different
latitude, we found that polymorphisms causing amino acidreplacements at the PHY domain, which may influence
thermal reversion of phytochrome, occur in association
with latitude in Phyllodoce.

２．岡山県の絶滅危惧種に関する調査研究
岡山県における絶滅危惧種の分布状況について、岩角地と渓流帯に重点を置いて調査した。キブネダイオウの定点
調査地では、河川氾濫による大規模な流失から 4 年を経過し、全体では氾濫前と比べて減少したが、漂着あるいは新生したと推定される個体群も確認された。また、県内ではごく少数の生育地が確認されていたアオガネシダ、シモツ
ケヌリトラノオ、コガネシダ、セッコク、マメヅタラン、
マダイオウなど、18 種について新分布地点を見いだした。
数種の既知集団の衰退または消滅が確認された。少なくとも 6 種においてレッドリストカテゴリーの変更が妥当であると考えられた。

2.	F ield sur veys on endangered plants of Okayama
Prefecture
Endangered species were surveyed focusing on rocky
places and riversides in Okayama Prefecture. Since 2017,
rheophytic Rumex nepalensis subsp. andreaeanus has
decreased at all populations, but some new individuals,
which were probably carried down from the upper stream
or germinated from seeds, were also detected. Besides,
new localities of 18 endangered species (Asplenium boreale,
A. wilfordii, Bulbophyllum dr ymoglossum, Dendrobium
moniliforme, Rumex madaio, Woodsia macrochlaena, etc.)
were found. A few known populations declined. At least on
six species, the red list categories in Okayama should bechanged.

11

ゲノム育種ユニット
遺伝資源機能解析グループ(Applied Genomics Unit)
Group of Genetic Resources and Functions

本グループではオオムギを中心とするイネ科作物の形
態や種子成分を制御する有用遺伝子の特定と機能解析を行っている。これまでに葉間期が短縮し葉が多数発生する
many-noded-dwarf 多節矮性突然変異体の解析を行い、原因遺伝子が 3 遺伝子座 MND1（7H）、MND4（5H）およびMND8（5H）に区分できることを解明し、そのうちの 2 遺伝子はイネの多節矮性遺伝子と異なるオオムギ固有の遺伝子の異常によることを示した。本年度の主要成果として、オオムギの顕著な形態突然変異体の一種である、内穎裂開突然変異体の分子遺伝学的解析があげられる。
我々は以前の研究で WUSCHEL-RELATED HOMEOBOX
3（WOX3）遺伝子がオオムギゲノム中に 2 個存在することを示した。そのうちの 1 個 NARROW LEAFED DWARF1（NLD1）の特性解析を行ったところ、側性器官の発達に極めて重要な役割を担うことを明らかにした。今回の研究ではもう一方の WOX3 遺伝子である、オオムギの内穎裂
開突然変異体 bifurcated palea（bip）の花器官と葉の表現型に注目して研究を実施した。bip 突然変異体の内穎は 2 つに裂開し、外穎側に向かって発達し、心皮と葯を包んでいた。また、bip 突然変異体は鱗被を欠いていた。正常なオオムギでは鱗被は外穎内部の雄ずい基部に 1 対存在する。
鱗被の欠損は、bip 突然変異体における花器官の重要な形
態変異である。さらに、bip 突然変異体は葉が細葉となる形態異常を示し、葉身長が短く、葉縁のトリコーム密度が低下していた。マップベースクローニングと遺伝子発現解析の結果、BIP 遺伝子はオオムギゲノム中に存在する 2 個
目の WOX3 遺伝子と同一であることがわかり、HvWOX3と命名した。さらに bip nld1 の二重突然変異体を交配によって作成し、表現型を調査したところ、葉身幅が著しく減少し、葉縁のトリコームも激減していることがわかった。多様な植物種の種々の WOX3 突然変異体における表
現型ならびに遺伝子発現パターンと比較した結果、オオ
ムギでは NLD1 と HvWOX3 の両方によって葉の両縁方向への成長とトリコーム発達が促進されると結論した。しかし、HvWOX3 は NLD1 とはオオムギの発生の基幹的な役割において機能分化していると考えられた。本研究は京都大学大学院農学研究科 吉川貴徳博士との共同研究の成果である。

Our group has been identifying and characterizing
impor tant genes that control morphogenesis and seedchemical compositions of cereal crops, particularly barley(Hordeum vulgare L.). Barley, the four th most highly
produced cereal in the world after wheat, rice and maize
is mainly utilized as malt, human food and animal feed.
Barley, a model crop of the tribe Triticeae, is importantin the comparative analyses of Poaceae. However, themolecular understanding about the developmental
processes including leaves and flower organs is limited
in barley. By exploiting ample mutants of barley either
spontaneous or induced in origin, we have been conducting
molecular investigation of unique morphological mutantsof barley. Our research mainly focuses on the molecularmechanisms underlying beneficial agricultural traits. Our
major achievement in 2022 is molecular dissection of abifurcated mutant of barley. These barley mutants show
obvious phenotypes in the palea, but their responsible
genes have not been fully clarified.
Our previous work characterized one of two WUSCHELRELATED HOMEOBOX 3 (WOX3) genes present in thebarley genome: NARROW LEAFED DWARF1 (NLD1).
We demonstrated that NLD1 plays a pivotal role in thedevelopment of lateral organs. In the present study,
we describe a bifurcated palea (bip) mutant of barley
focusing on flower and leaf phenotypes. The palea in the
bip mutant was split into two and developed inside thelemma surrounding the carpels and anthers. The bip
mutant is devoid of lodicules, which develop in pairs at
the base of the stamen within the lemma in normal barley.
The bip mutant also exhibited malformation of leaves,such as narrow leaf due to underdeveloped leaf-blade
width, and reduced trichome density. Map-based cloning
and expression analysis indicated that BIP is identical toanother barley WOX3 gene, named HvWOX3. The bip
nld1 double mutant exhibited greater reduction in leafblade width and number of trichomes. By comparing thephenotypes and gene expression patterns of various WOX3
mutants, we concluded that leaf bilateral outgrowth andtrichome development are promoted by both NLD1 andHvWOX3, but that HvWOX3 ser ves unique and pivotal
functions in barley development that differ from those of
NLD1. This achievement was obtained in collaboration
with Dr. Takanori Yoshikawa, Kyoto University.

12

統合ゲノム育種グループ

Group of Integrated Genomic Breeding

各種環境ストレスに適応した画期的な作物の開発に貢献するため、アフリカ栽培イネおよび野生イネに注目した
有用遺伝子の探索と、限られた育種母本から有用な遺伝変異を創出する新しい育種法の研究開発を行っている。また、動原体の機能低下を利用した普遍的かつ効率的な半数体誘導系統の作出系の開発を行っている。2022 年の研究進捗は以下のとおりである。

Our goal is the development of innovative crop varieties
which enable stable food production even under harshenvironments. For the sake, we explore useful gene(s)inherent in diverse germplasm such as African ricecultivars and wild rice, and tr y to establish a novel rice
breeding system creating useful genetic variations fromrestricted breeding materials. In addition, we have been
conducting molecular cytogenetic studies on the structureand function of nuclei and chromosomes using plant
species.

１．エラーを低減した新たな遺伝子型判定パイプラインの構築
Genotyping-by-sequencing を初めとする次世代シーケンサーを用いた遺伝子型判定法は、迅速かつ多検体を一度に処理できる反面、データに大量のエラーを含んでいる。本
年度は、ゲノム比較情報に基づきエラー検出率を低減し遺伝子型判定を行う解析パイプライン「MCPtagg」を新たに構築した。また、当該解析パイプラインをデータ解析環境 R でパッケージ化し「MCPtaggR」として GitHub（https://github.com/tomoyukif/MCPtaggR）で公開した。
さらに、遺伝子型判定後のデータに含まれるエラーを修正するツール GBScleanR も開発し、Bioconductor（https://doi.org/doi:10.18129/B9.bioc.GBScleanR） お よ び GitHub（https://github.com/tomoyukif/GBScleanR）で R パッケージを公開した。

1. Establishment of a novel genotyping pipeline
Next generation sequencing-based genotyping methods,
including genotyping-by-sequencing, allow us to obtaingenotype data from a large number of samples in one
sequencing r un simultaneously. Never theless, theseobtained genotype data usually contain unignorable
amount of error. In this year, we developed an R package“MCPtaggR” that provides a novel genotype calling
pipeline, in which error-prone markers can be eliminatedbased on comparative genomic information. In addition, we
also released another R package “GBScleanR” that enable
us genotype estimation from error-rich genotype data via
the error-pattern aware hidden Markov model.
2.	D evelopment of a novel breeding systems to create
useful genetic variants from restricted materials
QTL analysis was conducted using a selfed segregating
population of hybrid tetraploid lines obtained from antherculture of F 1 of Oryza glaberrima and Asian cultivatedrice (Or yza sativa). Significant QTL for seed fer tility,
culm length and dehiscence were found using dosage
information of the parents’ genomes based on GBS(genotyping by sequence) information.
Elemental analysis of straw and brown rice in the
MAGIC population consisting of eight high-yielding rice
varieties were conducted. By searching for genomic
regions with matching haplotype and phenotype patterns,
we detected not only key loci previously reported, but also
promising new loci involving zinc, copper, or molybdenum
absorption.

２．限られた育種母本から有用な遺伝変異を創出する新しい育種法の研究開発
オリザグラベリマとアジア栽培イネ（オリザサティバ）の F1 の葯培養で得られた種子稔性を有する雑種 4 倍体系
統の自殖分離集団を用いて QTL 解析を実施した。GBS に基づく両親ゲノムの dosage 情報を利用して、種子稔性や稈長および脱粒性に関する有意な QTL を見い出した。
8 種類の多収イネに由来する多系交雑集団（MAGIC）のワラおよび玄米の元素分析を行った。ハプロタイプと表現型が一致するゲノム領域を検索することにより、これまでに報告されている主要な遺伝子座を確認するとともに、亜鉛、銅、モリブデンの吸収に関与する有望な新規遺伝子座を検出した。
３．簡易画像機械学習を用いた顕微鏡画像中の物体検出モ
デルの構築
研究で得られる画像の自動解析は、多くの分野で必要とされている。このための手法のひとつとして機械学習を用いた画像解析が注目されているが、現状では、機械学習を用いた画像解析にはデータサイエンスの知識もしくは高価なアプリケーションが必要で、これが非データサイエン
ティストが機械学習を用いた画像解析を利用する際の障壁となっている。この障壁を打破するために、Apple 社がアプリケーション開発者向けに無料配布している Create
ML を用いた簡易画像機械学習パイプラインを構築し、顕微鏡画像中の細胞や花粉などの物体を検出するためのモデルを構築した。これらを用いることにより、非データサ
イエンティストが容易に顕微鏡画像中の物体を検出することが可能となった。

3.	C onstr uction of models for object detection in
microscope images using simple image machinelearning
Automatic analysis of images obtained in research isneeded in many fields. Image analysis using machinelear ning has been attracting attention as one of theautomatic analysis methods. However, image analysis
using machine lear ning requires knowledge of data
science or expensive applications, which is a barrier to theuse of image analysis using machine learning by non-data
scientists. To break down this barrier, we built a simple
image machine learning pipeline using Create ML, which
Apple distributes free of charge to application developers,
and constructed models to detect objects such as cells
and pollens in microscope images. Using these models,
non-data scientists can easily detect those objects in
microscope images.

13

次世代作物共同研究コア
作物デザイン研究チーム(Research Core for Future Crops)
Crop Design Research Team

本グループでは、研究所が保有する植物に関するさまざ
まなデータや遺伝資源を活用して、植物の様々な生理応答に関する知見を統合し、作物の生産性に有用な鍵遺伝子の探索やその機能の理解を推進している。今年度の研究成果の一部は以下の通りである。
本年度は、データ科学的アプローチでオオムギ遺伝資源を活用したゲノム科学的および遺伝学的研究に取り組んだ。具体的には、SV274 コアーコレクションの遺伝変異情
報と形質情報を整理しゲノムワイド関連解析（GWAS）を実施し遺伝領域の特定に成功した。また、ストレスによる成長抑制における小胞体ストレス応答の役割を理解する
分子遺伝学研究を進めた。今後、これらの研究を継続しな
がらより多くの所員との共同研究を進めていく。

Our group endeavors to identify key genes for crop
productivity and to understand their physiological andgenetic functions by utilizing germplasms kept at IPSR.
In the 2022 fiscal year, we have conducted genomic andgenetic research on a barley worldwide collection SV274.
The exome-wide genetic variations were obtained andsubjected to genome-wide association studies (GWAS)
for ten agronomic traits, including grain-size-related awn
length and glume length. In parallel, we have conducted
molecular genetic research to understand the role of theunfolded protein response (UPR), a stress-responsive
transcription regulator y system against diverse stress
categories, to the stress-responsive growth inhibition.
Next year, we will continue these studies and make further
efforts to strengthen our collaborative network to pursue
our research.

Field Flora Research Team

フィールドフローラ研究チーム
本班はイネ、オオムギを対象として二毛作体系における年間を通じた植物の生長とその根圏の微生物叢、並びに環境要因として施肥、土壌イオンや野生植物の測定・観察を通じ、これら要因が複雑に絡み合うネットワークの変動を明らかにしていくことで、病徴や金属イオンストレスに関わる重要な因子を見いだすことを目的としている。3 年間のサンプリングと微生物叢の解析を通じて、3 年間の二毛作圃場では微生物叢の構成変化が繰り返されること、オオ
ムギ・イネに特有の細菌、共通するもの、根にまたは根圏土壌に多く存在する細菌が見つかるなど、生育環境に応じた生息域に特異的な微生物が存在することが明らかになった。本年は新たに酸性・中性・アルカリ性の圃場サン
プルを用い解析を行っている。

This team was started with the aim to analyze the plant
growth and rhizosphere microbiome of double-croppingof rice and barley in relation to environmental factors
such as fertilization, diseases and metal ion stress andto find changes in the complex network of these factors
throughout the year. Through 3 years of sampling andanalysis of the microbiome we found that the microbiome
structure stably cycled in 3 years. Also, we found specificbacteria each in barley and rice, or common in bothplants, and root or soil-specific bacteria, suggesting their
specificity to environmental niches. This year we started
sampling and analysis of the microbiome in acid, neutral,
and alkali soils.

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Crop Innovative Design Research Team

作物イノベーティブデザイン研究チーム
本研究チームは、オオムギの遺伝子改変技術の高度化とオオムギを利用した作物イノベーション研究拠点の構築を行っている。オオムギ − 微生物間相互作用、種子成分工学、
環境ストレス耐性育種などの分野で共同研究体制を整え、資源植物科学の発展に寄与することを目的としている。

Our research aims to upgrade the genetic modification
technology in barley and to establish a research core forcrop innovation using barley. We are conducting joint
research in the fields of barley-microbial interaction,
grain component engineering and environmental stress
tolerance breeding.

１．オオムギの遺伝子改変技術の高度化
オオムギ研究の加速化を目指して遺伝子改変技術（形質転換およびゲノム編集技術）の高度化を行っている。

1.	A dvancement of genetic modification technology inbarleyWe are upgrading the genetic modification technologies(genetic transformation and genome editing technologies)
to accelerate barley research.

２．ムギ類生存圏におけるウイルス叢の解明
オオムギおよびコムギの生存圏に存在するウイルスを網羅的に解析し、カタログ化を行っている。これらの成果を元に、イネ科作物の遺伝子解析・改変に有効なウイルス
ベクターの構築ならびにその耐病性メカニズムや生物間相互作用研究への応用を目指している。

2. Analysis of viromes in the ecosphere of Triticeae species
We are comprehensively analyzing the viromes in thebarley and wheat ecosphere to construct effective viral
vectors for genetic transformation and to understand thedisease resistance and biological interaction in Triticeae
crops.

３．オオムギ種子の澱粉粒の形状育種
オオムギ種子の澱粉粒の形状の改変を行い、新しい澱粉
特性を有するオオムギの開発を行なっている。また、オ
オムギの澱粉粒の形成機構の解明を目指した基盤研究を行っている。

3. Morphological breeding of starch grains in barley seeds
Modification of starch grain morphology of barleyseeds is in progress. The aim is to develop barley plants
with novel starch properties and increase the availabilityof barley. Basic research to elucidate the molecularmechanism of starch grain formation is also conducted.

４．オオムギの環境ストレス耐性育種のための基盤研究
高／低温ストレス耐性遺伝子の導入やミネラルストレス関連遺伝子を改変した形質転換オオムギのセットを作製し、オオムギの環境ストレス耐性機構の網羅的解析を目指している。

作物・環境デザイン研究チーム

4. Elucidation of environmental stress tolerance in barley
Introduction of environmental stress-related genes,
such as mineral uptake/exclusion genes into barley isin progress. We will generate transgenic barley plants
over-expressing or down-regulating these genes tocomprehensively analyze the stress tolerance mechanism.

Crop x Environment Design Research Team

岡山県を含む西南暖地では季節毎に複数の作物を同一圃場で栽培する二毛作が伝統的に実践されている。持続的な農業生産のためには、栽培環境の季節変動、適応的な作物の遺伝子型そしてそれらの相互作用を理解し育種に繋げていくことが必要である。2022 年に開始した本チー
ムでは、植物研で継続的に取得してきたオオムギのコア・コレクションの複数年、複数環境での農業形質データおよび、イネ・オオムギの二毛作圃場における土壌ミネラル、
根圏微生物叢、圃場環境データをプロジェクトの原資として、作物ｘ環境相互作用に遺伝構造に関する理解を深化させ、数理モデルによる形質影響予測から多系交配集団などのリソースを使った検証研究への展開を図る。2022 年着
任のクロスアポイントメント教員を含むユニット横断的な共同研究体制を構築して、以下の課題に協働して取り組む。

In the southwest region including Okayama Prefecture,
double cropping, in which multiple crops are grown inthe same field each season, is traditionally practiced. For
sustainable agricultural production, it is impor tant tounderstand the seasonal transition of the field environment,
adaptive crop genotypes, and their interactions; and,
connect them to crop breeding.
We h a v e b e e n a n a l y z i n g t h e m u l t i - y e a r, m u l t i environment agronomic trait data obtained on the barley
germplasm at IPSR, as well as the soil minerals andrhizosphere microbiota in double-cropping fields of riceand barley.
This team was star ted in 2022 to deepen our
understanding of the genetic str uctur e of cr op x
environment interactions, and pursue verification researchusing resources such as multi-parent populations andmathematical models predicting the effect on agronomic
traits. We will build a cross-unit joint research system
including cross-appointed faculty members who will
be appointed in 2022, and work together to tackle thefollowing issues:

１．作物遺伝資源の多環境栽培データの継続取得
２．作物ｘ環境相互作用のゲノム構造基盤解明
３．数理モデル予測と遺伝資源を使った POC 実証

1.	Continuous acquisition of multi-environment cultivation
data for crop genetic resources
2.	E lucidation of genome str uctural basis of crop x
environment interaction
3.	P OC demonstration using mathematical model
prediction and genetic resources

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RECTOR program

RECTOR プログラム
本グループでは本研究所の光環境適応グループ、本学の異分野基礎科学研究所の光合成・構造生物学研究コア、ドイツミュンスター大学のミハエルヒップラー教授の研究室と研究協力・支援体制を整え、植物の生育に重要な光合成反応を起点として植物で行われる多くの代謝反応との関わりを明らかにし、光合成反応で得られたエネルギーが植物に利用される機構を明らかにする。とりわけ光合成における光エネルギー利用機構を遺伝学・分子生物学・生化
学・構造生物学を駆使して研究を進めている。今年度の研究成果は以下の通りである。

In this RECTOR program, we have established aresearch collaboration system with three research groups;
the laborator y of photo-environmental adaptation groupin Institute of Plant Science and Resources, ResearchInstitute of Interdisciplinary Science, and the laboratoryof Professor Michael Hippler in the University of Münster,
Ger many. We will clarify how the photosynthesis
participates as an essential energy supplier with othernumerous numbers of metabolic processes taking placein plant cell. To achieve this aim, we are studying themechanism of light energy utilization in photosynthesis
using genetics, molecular biology, biochemistr y, andstructural biology. The results of this year’s research are
as follows.

１．光捕集タンパク質をチラコイド膜に組み込む分子集合
装置の作用機序を提案
光捕集タンパク質（LHC）はより多くの光を捕集するとともに余剰な光のエネルギーを除去することで、適切な量の光のエネルギーを効率的に光合成が利用するために貢献する。LHC の葉緑体オルガネラへの輸送ならびにチ
ラコイド膜への組み込み機構には不明な点が多い。CpSRP
経路がチラコイド膜への組み込み経路として提案されていたがクロロフィル合成欠損株ならびに CpSRP 経路欠損株を用いた生化学的解析により未知の経路の存在が示唆された。ここで CpSRP 経路を構成する因子の 1 つである
ALB3.1 タンパク質に HA アフィニティータグを融合した変異株から ALB3.1 複合体を高度精製し生化学的分析を行なう事で、ALB3.1 は SRP54 と SRP43 と相互作用し LHCの組み込みを行うことを示した。

1.	Propose new insight for the assembly apparatus which
incorporates light har vesting complex subunits intothylakoid membrane
Light har vesting complex (LHC) contributes efficient
light energy usage on photosynthesis by increasing theyield of light energy and dissipating excess light energy.
So far, CpSRP pathway has been proposed to regulate
thylakoid membrane incorporation for the nuclear geneencoded LHC subunits while biochemical characterization
has to be elucidated. Recent work suggested that additional
pathway would exist by using CpSRP pathway deficientmutant and/or chlorophyll synthesis deficient mutant.
The ALB3.1 protein is reported as a component of CpSRP
pathway. Here we generated the mutant expressing HAtagged ALB3.1 protein and characterized isolated ALB3.1
protein complex biochemically. We found that ALB3.1
protein functions for LHC incorporation interacting with
SRP54 and SRP43.

２．光化学系Ｉ複合体における電子伝達の分子機構を原子解像度の構造生物学で解明
光化学系Ｉ複合体（PSI）はチラコイド膜ルーメン側でプラストシアニン（Pc）から電子を受け取るが構造情報に基づく反応機構は不明な点が多かった。PSI と Pc の相互作用に関わる部位特異的変異を PSI 側に導入した緑藻ク
ラミドモナスを用いた生物物理学測定と、Pc と結合した豆の PSI 構造の高分解能構造解析を組み合わせて PSI に
Pc が結合し電子伝達を行う反応機構を明らかにした：（1）静電的相互作用による Pc と PSI の結合、（2）疎水相互作用による Pc と PSI 結合の安定化、（3）Pc から PSI への分
子内での電子伝達反応、（4）Pc が PSI から解離する。また緑藻クラミドモナスから二量体 PSI を単離しクライオ電顕で構造解析を行った。二量体 PSI は 40 サブユニットと118 膜貫通ヘリックスと 568 の色素分子から構成され、単量体の PSAH/LHCA2 サブユニットが脱落した部分で単量体が接触し二量体となる。この接触部位に LHCII が結合
し PSI の光捕集能力が一時的に増加する（ステート遷移）
ことから PSI の機能的な超複合体再構築に重要な構造部位と期待される。PGR5 を欠損させるとサイクリック電子伝
達経路が減少し水素発生経路が増加するが、LHCA2 も欠損させた lhca2/pgr5 の二重欠損株は lhca2 または pgr5 の一重欠損株よりも水素発生能力が高いことを見いだした。
今後、PSAH/LHCA2 部位に着目し PSI 超分子複合体構造
が動的に再構築する構造と機能に関する研究進展が期待される。

2.	Molecular mechanistic insight for electron transfer of
Photosystem I revealed by atomic resolution structural
biology
After photo-oxidation, P700+ of photosystem I (PSI) is
reduced by an electron from plastocyanin (Pc) at thylakoid
luminal side. By employing reversed genetics with thegreen alga Chlamydomonas and high resolution cryogenic
electron microscopy (cryo-EM) of a PSI-Pc complex frompea, we revealed mechanical steps of electron transfer
process between Pc and PSI. The mechanical steps
are summarized in the following steps, (i) electrostaticinteractions (ii) stabilized by hydrophobic interaction, (iii)electron transfer from Pc to PSI within the intermolecularcomplex, (iv) dissociation. In addition, we revealed a
PSI from the green alga C. reinhardtii that is organized
as a homodimer, comprising 40 protein subunits with118 transmembrane helices that provide scaffold for 568
pigments. Our cr yo-EM structure identified the lighthar vesting protein LHCA9 as the key element for the
dimerization. This first discover y of a PSI-dimer opens
several questions. The interface between the monomers islacking PSAH/LHCA2 and thus partially overlaps with thesurface area that would bind one of the LHCII complexes
in state transition. These findings imply that PSAH/LHCA2
may play a regulatory role in defining the macromolecularorganization of PSI -LHCI. Indeed, the depletion of
LHCA2 in conjunction with PGR5 alters the regulation ofphotosynthetic electron transfer and hydrogen production
in vivo, whereby H2 production was significantly increasedin the double mutant in comparison to the single mutants
lhca2 and pgr5, indicating physiological consequences of
PSI-LHCI structural dynamics.

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出版物リスト (List of Publication)
大気環境ストレスユニット (Atmospheric Stress Unit)
光環境適応研究グループ (Plant Light Acclimation Research Group)（1） Okegawa, Y., Tsuda, N., Sakamoto, W., Motohashi, K. Maintaining the Chloroplast Redox Balance through the PGR5Dependent Pathway and the Trx System Is Required for Light-Dependent Activation of Photosynthetic Reactions.
Plant Cell Physiol. 63: 92-103. doi.org/10.1093/pcp/pcab148 (2022. 1.)（2） Nagamatsu, S., Wada, T., Matsushima, R., Fujita, N., Miura, S., Crofts, N., Hosaka, Y., Yamaguchi, O., Kumamaru, T.
Mutation in BEIIb mitigates the negative effect of the mutation in ISA1 on grain filling and amyloplast formation inrice. Plant Mol. Biol. 108: 497-512. doi.org/10.1007/s11103-022-01242-3 (2022. 3.)（3） Yamatani, H., Ito, T., Nishimura, K., Yamada, T., Sakamoto, W., Kusaba, M. Genetic analysis of chlorophyll synthesis
and degradation regulated by BALANCE of CHLOROPHYLL METABOLISM. Plant Physiol. 189: 419-432. doi.
org/10.1093/plphys/kiac059 (2022. 5.)（4） Wahinya, F. W., Yamazaki, K., Jing, Z., Takami, T., Kamiya, T., Kajiya-Kanegae, H., Takanashi, H., Iwata, H., Tsutsumi, N.,
Fujiwara, T., Sakamoto, W. Sorghum Ionomics Reveals the Functional SbHMA3a Allele that Limits Excess Cadmium
Accumulation in Grains. Plant Cell Physiol. 63: 713-728. doi.org/10.1093/pcp/pcac035 (2022. 5.)（5） Ida, T., Crofts, N., Miura, S., Matsushima, R., Fujita, N. Starch Biosynthetic Protein Complex Formation in Rice ss2a be2b(+) Double Mutant Differs from Their Parental Single Mutants. J. Appl. Glycosci. 69: 23-33. doi.org/10.5458/jag.jag.
JAG-2021_0015 (2022. 5.)（6） Ohnishi, N., Sugimoto, M., Kondo, H., Shioya, K. I., Zhang, L., Sakamoto, W. Distinctive in vitro ATP Hydrolysis Activityof AtVIPP1, a Chloroplastic ESCRT-III Superfamily Protein in Arabidopsis. Front. Plant Sci. 13: 949578. doi.
org/10.3389/fpls.2022.949578 (2022. 7.)（7） Takanashi, H., Kajiya-Kanegae, H., Nishimura, A., Yamada, J., Ishimori, M., Kobayashi, M., Yano, K., Iwata, H., Tsutsumi,N., Sakamoto, W. DOMINANT AWN INHIBITOR Encodes the ALOG Protein Originating from Gene Duplication
and Inhibits AWN Elongation by Suppressing Cell Proliferation and Elongation in Sorghum. Plant Cell Physiol. 63:
901-918. doi.org/10.1093/pcp/pcac057 (2022. 7.)（8） Okegawa, Y., Sakamoto, W., Motohashi, K. Functional division of f-type and m-type thioredoxins to regulate the Calvincycle and cyclic electron transport around photosystem I. J. Plant Res. 135: 543-553. doi.org/10.1007/s10265-02201388-7 (2022. 7.)（9） 小川 由・坂本 亘 チラコイド膜の形成と構造維持に関与する膜リモデリング分子．光合成研究 32: 64-74. (2022. 8.)（10）Osinde, C., Sakamoto, W., Kajiya-Kanegae, H., Sobhy, I. S., Tugume, A. K., Nsubuga, A. M., Galis, I. Identification ofquantitative trait loci associated with sorghum susceptibility to Asian stem borer damage. J. Plant Interact. 18:2153182. doi.org/10.1080/17429145.2022.2153182 (2022. 12.)環境応答機構研究グループ (Group of Environmental Response Systems)（1） Matsuura, M., Nomoto, M., Itaya, T., Aratani, Y., Iwamoto, M., Matsuura, T., Hayashi, Y., Mori, T., Skelly, M.
J., Yamamoto, Y. Y., Kinoshita, T., Mori, I. C., Suzuki, T., Betsuyaku, S., Spoel, S. H., Toyota, M., Tada, Y.
Mechanosensory trichome cells evoke a mechanical stimuli-induced immune response in Arabidopsis thaliana. Nat.
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環境生物ストレスユニット (Biotic Stress Unit)
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22A. 博士学位論文 （岡山大学）(2022. 9.)

遺伝資源ユニット (Genetic Resources Unit)
ゲノム多様性グループ (Group of Genome Diversity)（1） Sakkour, A., Mascher, M., Himmelbach, A., Haberer, G., Lux, T., Spannagl, M., Stein, N., Kawamoto, S., Sato, K.
Chromosome-scale assembly of barley cv. ʻHaruna Nijoʼ as a resource for barley genetics. DNA Research 29:
dsac001. doi.org/10.1093/dnares/dsac001 (2022. 2.)（2） 最相大輔 亜熱帯気候を活用した温暖化環境下での安定生産を目指した作物の遺伝育種研究．アグリバイオ 6: 63-65.
ISBN 01327-02 (2022. 2.)（3） 久野 裕 オオムギの形質転換およびゲノム編集．ひとりではじめる植物バイオテクノロジー入門 組織培養からゲノム編集まで ．（田部井豊ほか編）国際文献社．pp. 37-47. ISBN 978-4910603032 (2022. 3.)（4） Nomura, Y., Shimono, Y., Mizuno, N., Miyoshi, I., Iwakami, S., Sato, K., Tominaga, T. Drastic shift in flowering phenologyof F1 hybrids causing rapid reproductive isolation in Imperata cylindrica in Japan. J. Ecol. 110: 1548-1560. doi.
org/10.1111/1365-2745.13890 (2022. 4.)（5） Gu, M., Huang, H., Hisano, H., Ding, G., Huang, S., Mitani-Ueno, N., Yokosho, K., Sato, K., Yamaji, N., Ma, J. F. A crucialrole for a node-localized transporter, HvSPDT, in loading phosphorus into barley grains. New Phytol. 234: 1249-1261.
doi.org/10.1111/nph.18057 (2022. 5.)（6） Yoshikawa, T., Hisano, H., Hibara, K-I., Nie, J., Tanaka, Y., Itoh, J-I., Taketa, S. A bifurcated palea mutant infers functional
dif ferentiation of WOX3 genes in flower and leaf morphogenesis of barley. AoB PLANTS 14: plac019. doi.
org/10.1093/aobpla/plac019 (2022. 6.)（7） Nakayama, R., Safi, M. T., Ahmadzai, W., Sato, K., Kawaura, K. Comparative transcriptome analysis of synthetic andcommon wheat in response to salt stress. Sci. Rep. 12: 11534. doi.org/ 10.1038/s41598-022-15733-2 (2022. 7.)（8） 安倍史高・加星光子・佐藤和広 ゲノム編集コムギの実用化に向けて．アグリバイオ 6: 791-795. (2022. 8.)

29

（9） Sakkour, A. Analysis of heterosis based on barley genome. 博士学位論文 （岡山大学）(2022. 9.)（10）Voyron, S., Tonon, C., Guglielmone, L., Celi, L., Comina, C., Ikeda, H., Matsumoto, N., Petrella, D., Ryan, J., Sato, K.,
Seike, A., Varriale, I., Yamashita, J., Longo, S. Diversity and structure of soil fungal communities unveil the pastbuilding history of a burial mound of ancient Japan (Tobiotsuka Kofun, Okayama Prefecture). J. Archaeol. Sci. 146:
105656. doi.org/10.1016/j.jas.2022.105656 (2022. 10.)（11）佐藤和広 ナショナルバイオリソースプロジェクトとオオムギ遺伝資源．学術の動向 27: 44-47. (2022. 11.)（12）久野 裕 オオムギの標的変異．失敗を防ぐコツが満載 植物のゲノム編集実験プロトコール ．（原 奈保・雑賀啓明・
土岐精一編）化学同人．pp. 218-227. ISBN 978-4759820881 (2022. 12.)（13）Okada, K., Tanaka, T., Fukuoka, S., Oono, Y., Mishina, K., Oikawa, T., Sato, K., Kato, T., Komatsuda, T., Nama, K. Twodominant genes in barley (Hordeum vulgare L.) complementarily encode perfect resistance to Japanese soil-borne
wheat mosaic virus. Breed. Sci. 72: 372-382. doi.org/10.1270/jsbbs.22046 (2022.12.)（小泉 望・（14）加星光子・安倍史高・佐藤和広 穂発芽しないコムギを目指して．植物バイオテクノロジーでめざす SDGs ．
加藤 晃編）化学同人．pp. 76-88. ISBN 978-4759820867 (2022. 12.)（15）Kim, J. S., Takahagi, K., Inoue, K., Shimizu, M., Uehara-Yamaguchi, Y., Kanatani, A., Saisho, D., Nishii, R., Lipka, A. E.,
Hirayama, T., Sato, K., Mochida, K. Exome-wide variation in a diverse barley panel reveals genetic associations withten agronomic traits in Eastern landraces. J. Genet. Genomics. doi.org/10.1016/j.jgg.2022.12.001 (2022. 12. Online
preview)

野生植物グループ (Group of Wild Plant Science)（1） Noda, H., Fuse, S., Yamashita, J., Poopath, M., Pooma, R., Tamura, M. N. Phylogenetic analysis of Dioscorea(Dioscoreaceae) from Japan and adjacent regions based on plastid and nuclear DNA sequences, with specialreference to the taxonomic status of selected taxa. Bot. J. Linnean Soc. 198: 186-214. doi.org/10.1093/botlinnean/
boab052 (2022. 2.)（2） Ikeda, H. Decades-long phylogeographic issues: complex historical processes and ecological factors on genetic structureof alpine plants in the Japanese Archipelago. J. Plant Res. 135: 191-201. doi.org/10.1007/s10265-022-01377-w (2022.
3.)（3） Kurata, S., Sakaguchi, S., Ikeda, H., Hirota, S. K., Kurashima, O., Suyama, Y., Ito, M. From East Asia to Beringia:
reconstructed range dynamics of Geranium erianthum (Geraniaceae) during the last glacial period in the northern
Pacific region. Plant Syst. Evol. 308: 28. doi.org/10.1007/s00606-022-01820-4 (2022. 8.)（4） Voyron, S., Tonon, C., Guglielmone, L., Celi, L., Comina, C., Ikeda, H., Matsumoto, N., Petrella, D., Ryan, J., Sato,K., Seike, A., Varriale, I., Yamashita, J., Favero-Longo, S. E., Bonifacio, E. Diversity and structure of soil fungal
communities unveil the building histor y of a burial mound of ancient Japan (Tobiotsuka Kofun, Okayama
Prefecture). J. Archaeol. Sci. 146: 105656. doi.org/10.1016/j.jas.2022.105656 (2022. 10.)

ゲノム育種ユニット (Applied Genomics Unit)
遺伝資源機能解析グループ (Group of Genetic Resources and Functions)（1） Yoshikawa, T., Hisano, H., Hibara, K-I., Nie, J., Tanaka, Y., Itoh, J-I., Taketa, S. A bifurcated palea mutant infers functional
dif ferentiation of WOX3 genes in flower and leaf morphogenesis of barley. AoB PLANTS 14: plac019. doi.
org/10.1093/aobpla/plac019 (2022. 6.)（2） 武田 真 観賞用オオムギの開発に利用可能な遺伝子源．アグリバイオ 6: 867-878. (2022. 8.)

統合ゲノム育種グループ (Group of Integrated Genomic Breeding)（1） Hori, K., Okunishi, T., Nakamura, K., Iijima, K., Hagimoto, M., Hayakawa, K., Shu, K., Ikka, T., Yamashita, H., Yamasaki,M., Takeuchi, Y., Koyama, S., Tsujii, Y., Kayano, T., Ishii, T., Kumamaru, T., Kawagoe, Y., Yamamoto, T. Genetic
Background Negates Improvements in Rice Flour Characteristics and Food Processing Properties Caused by a
Mutant Allele of the PDIL1-1 Seed Storage Protein Gene. Rice 15: 13. doi.org/10.1186/s12284-022-00560-w (2022. 5.)（2） Yamashita, M., Ootsuka, C., Kubota, H., Adachi, S., Yamaguchi, T., Murata, K., Yamamoto, T., Ueda, T., Ookawa, T.,
Hirasawa, T. Alleles of high-yielding indica rice that improve root hydraulic conductance also increase flag leaf
photosynthesis, biomass, and grain production of japonica rice in the paddy field. Field Crop. Res. 289: 108725. doi.
org/10.1016/j.fcr.2022.108725 (2022. 10.)30

次世代作物共同研究コア (Research Core for Future Crops)
作物デザイン研究チーム (Crop Design Research Team)（1） Kim, J. S., Takahagi, K., Inoue, K., Shimizu, M., Uehara-Yamaguchi, Y., Kanatani, A., Saisho, D., Nishii, R., Lipka, A. E.,
Hirayama, T., Sato, K., Mochida, K. Exome-wide variation in a diverse barley panel reveals genetic associations withten agronomic traits in Eastern landraces. J. Genet. Genomics. doi.org/10.1016/j.jgg.2022.12.001 (2022. 12. Online
preview)

RECTOR プログラム (RECTOR Program)（1） Buchert, F., Scholz, M., Hippler, M. Electron transfer via cytochrome b6 f complex displays sensitivity to antimycin A upon
STT7 kinase activation. Biochem. J. 479: 111-127. doi.org/10.1042/BCJ20210802 (2022. 1.)（2） Rathod, M. K., Nellaepalli, S., Ozawa, S. I., Kuroda, H., Kodama, N., Bujaldon, S., Wollman, F. A., Takahashi, Y. Assembly
Apparatus of Light-Har vesting Complexes: Identification of Alb3.1-cpSRP-LHCP Complexes in the Green Alga
Chlamydomonas reinhardtii. Plant Cell Physiol. 63: 70-81. doi.org/10.1093/pcp/pcab146 (2022. 1.)（3） Marchetti, G. M., Fusser, F., Singh, R. K., Brummel, M., Koch, O., Kummel, D., Hippler, M. Structural analysis revealed
a novel conformation of the NTRC reductase domain from Chlamydomonas reinhardtii. J. Struct. Biol. 214: 107829.
doi.org/10.1016/j.jsb.2021.107829 (2022. 1.)（4） Maeda, H., Takahashi, K., Ueno, Y., Sakata, K., Yokoyama, A., Yarimizu, K., Myouga, F., Shinozaki, K., Ozawa, S. I.,
Takahashi, Y., Tanaka, A., Ito, H., Akimoto, S., Takabayashi, A., Tanaka, R. Characterization of photosystem II
assembly complexes containing ONE-HELIX PROTEIN1 in Arabidopsis thaliana. J. Plant Res. 135: 361-376. doi.
org/10.1007/s10265-022-01376-x (2022. 2.)（5） Elman, T., Ho, T. T. H., Milrad, Y., Hippler, M., Yacoby, I. Enhanced chloroplast-mitochondria crosstalk promotes ambient
algal-H2 production. Cell Rep. Phys. Sci. 3: 100828. doi.org/10.1016/j.xcrp.2022.100828 (2022. 4.)（6） Ho, T. T. H., Schwier, C., Elman, T., Fleuter, V., Zinzius, K., Scholz, M., Yacoby, I., Buchert, F., Hippler, M. Photosystem
I light-harvesting proteins regulate photosynthetic electron transfer and hydrogen production. Plant Physiol. 189:329-343. doi.org/10.1093/plphys/kiac055 (2022. 5.)（7） Naschberger, A., Mosebach, L., Tobiasson, V., Kuhlgert, S., Scholz, M., Perez-Boerema, A., Ho, T. T. H., Vidal-Meireles,
A., Takahashi, Y., Hippler, M., Amunts, A. Algal photosystem I dimer and high-resolution model of PSI-plastocyanin
complex. Nat. Plants 8: 1191-1201. doi.org/10.1038/s41477-022-01253-4 (2022. 10.)31

国際会議およびシンポジウム(List of International Conferences and Symposia)
大気環境ストレスユニット (Atmospheric Stress Unit)
光環境適応研究グループ (Plant Light Acclimation Research Group)（1） Wacera, F., W. Elemental profiling of sorghum grains reveals a functional cadmium transporter in Japanese Takakibi.
Plant Biology 2022, Portland, Oregon, USA, July 9-13, 2022.
（2） Gupta, T., Klumpe, S., Gries, K., Heinz, S., Wietrzynski, W., Ohnishi, N., Sakamoto, W., Nickelsen, J., Schuller, J., Schroda,M., Benjamin Engel, B. The role of VIPP1 in thylakoid biogenesis and maintenance. 18th International Congress on
Photosynthesis Research, Dunedin, New Zealand (Hybrid), July 31-Aug. 5, 2022.
（3） Ogawa, Y., Iwano, M., Kawamoto, A., Peng, L., Myouga, F., Kurisu, G., Shikanai, T. The function of the FZL protein,a dynamin-like protein localized to the grana margin, to maintain the effective photosynthesis. 18th International
Congress on Photosynthesis Research, Dunedin, New Zealand (Hybrid), July 31-Aug. 5, 2022.
（4） Okegawa, Y., Motohashi, K., Sakamoto, W. Impaired PGR5-dependent photosystem I cyclic electron transport alleviates
the growth defects in the ntrc mutant by redirecting electron distribution from ferredoxin. 18th International
Congress on Photosynthesis Research, Dunedin, New Zealand (Hybrid), July 31-Aug. 5, 2022.
（5） Sakamoto, W. Basics in chloroplast biogenesis and photosynthesis. 2022 CANR full english International featuresseries
speech & lecture, Taichung, Taiwan, Nov. 3, 2022.
（6） Sakamoto, W. Gene hunting of novel agronomical traits in sorghum with a high-density mapping population. Seminar inadvances in plant science research, Tainan, Taiwan, Nov. 4, 2022.
（7） Sakamoto, W. Thylakogenesis: maintenance of thylakoid membrane architecture and integrity in Arabidopsis. Seminar at
Agricultural Biotechnology Research Center, Academia Sinica, Taipei, Taiwan, Nov. 10, 2022.
（8） Sakamoto, W. QTL analysis of novel agronomical traits using a high-density mapping population in sorghum. 16th
International Symposium on Biocatalysis and Agricultural Biotechnology, Taichung, Taiwan, Nov. 9-11, 2022.
（9） Okegawa, Y. Balanced regulation of PGR5-dependent PSI cyclic electron transport is required for normal plant growth.
International Symposium on Photosynthesis and Chloroplast Regulation, Kobe, JAPAN, Nov. 15-18, 2022.
（10）Sakamoto, W. Maintenance of thylakoid membrane architecture and integrity in Arabidopsis. International Symposiumon Photosynthesis and Chloroplast Regulation, Kobe, JAPAN, Nov. 15-18, 2022.
（11）Matsushima, R. Cytological and genetic studies of starch granule morphology using barley. Biochemistr y andMetabolism Special Seminar at John Inness Centre, Norwich, UK, Nov. 22, 2022.

環境応答機構研究グループ (Group of Environmental Response Systems)（1） Mamiya, A., Otsuka, K., Kobayashi, T., Yagi, Y., Nakamura, T., Hirayama, T., Fukaki, H., Sugiyama, M. Interaction
between polyadenylation and C-to-U editing of mitochondrial mRNA involved in cytochorome c maturation, 12th
International Conference for Plant Mitochondrial Biology, Sweden (online), May 22-27, 2022.
（2） Ooi, L., Mori, I. C., Matsuura, T., Nishimura, Y., Hirayama, T. Mitigation of short-styled flowers in Solanum lycopersicumby trehalose treatment. Plant Biology 2022, Portland, OR, USA, July 8-13, 2022.
（3） Ikeda, Y., Nakamura, K., Togawa, T., Nishihama, R., Yamaoka, S., Araki, T., Kohchi, T., Mathieu, O., Yamato, K. T.
Regulatory system of DNA methylation in Marchantia: a demethylation mechanism distinct from that of flowering
plants. CSHA meeting on Integrative Epigenetics in Plants, Awaji, Japan, Dec. 12-15, 2022.
（4） Nakamura, K., Kikuchi, Y., Shiraga, M., Kotake, T., Taketa, S., Ikeda, Y. Functional characterization of a putative
epigenetic regulator that affects awn elongation in barley. CSHA meeting on Integrative Epigenetics in Plants,
Awaji, Japan, Dec. 12-15, 2022.

環境機能分子開発グループ (Group of Functional Biomolecular Discovery)（1） Sugimoto, M. Change to super early-ripening barley and expression of flowering-control genes by disturbance of lighting
condition. 44th Scientific Assembly of the Committee on Space Research, Greece (Online), July 16-24, 2022.
（2） Sugimoto, M., Murakami, N. Transformation of major ginsenosides into minor ginsenosides in ginseng by pickling insalted rice malt paste. 22nd International Congress of Nutrition, Tokyo, Japan, Dec. 6-11, 2022.

32

土壌環境ストレスユニット (Soil Stress Unit)
植物ストレス学グループ (Group of Plant Stress Physiology)（1） Ma, J. F. Cadmium accumulation in cereal crops-from molecular mechanisms to breeding. Plant Nutrition 2022, 54th
Annual Conference of the German Society of Plant Nutrition, From Molecules to Traits-How Plants Feed the Future,
Raitenhaslach, Germany, Oct. 4-5, 2022.
（2） Huang, S., Mu, S., Yamaji, N., Zheng, L. Q. and Ma, J. F. Role of ZIP family transporters in zinc uptake and distribution
in rice. Plant Nutrition 2022, 54th Annual Conference of the German Society of Plant Nutrition, From Molecules toTraits-How Plants Feed the Future, Raitenhaslach, Germany, Oct. 4-5, 2022.

植物分子生理学グループ (Group of Plant Molecular Physiology)（1） Onishi, A. Knockout of OsPIP2;4, a rice aquaporin, changes root water permeability but not overexpression. IPSRInternational Web Forum on Plant Stress Science by Early-Career Scientists 2022, Kurashiki, Japan, Sep. 14, 2022.
（2） Ono, S. Na+ and K+ transport mechanism of ion channel aquaporins. IPSR International Web Forum on Plant Stress
Science by Early-Career Scientists 2022, Kurashiki, Japan, Sep. 14, 2022.

環境生物ストレスユニット (Biotic Stress Unit)
植物・微生物相互作用グループ (Group of Plant-Microbe Interactions)（1） Shamsi, W., Kondo, H., Rigling, D., Prospero, S. Novel, diverse RNA viruses in the Japanese population of the ash
dieback fungus, Hymenoscyphus fraxineus. 5th mycovirus symposium, Gargnano, Italy, May 30-June 2, 2022.
（2） Cornejo, C., Gaehwiler, S., Shamsi, W., Kondo, H., Suzuki, N., Rigling, D. Fusagraviruses in Cryphonectria species. 5th
mycovirus symposium, Gargnano, Italy, May 30-June 2, 2022.
（3） Sato, Y., Hisano, S., Lopez Hererra, C., Kondo, H., Suzuki, N. Partnership between capsidless (+)ssRNA yadokariviruses
and their host dsRNA viruses: Promiscuous or virtuous? 5th mycovirus symposium, Gargnano, Italy, May 30-June 2,
2022.
（4） Sokty, N., Kondo, H., Suzuki, N., Sato, I., Takemoto, D., Arakawa, M., Chiba, C. Biological impact of multiple
partitiviruses infections on Rhizoctonia oryzaesativae. 5th mycovirus symposium, Gargnano, Italy, May 30- June 2,
2022.
（5） Hisano, S., Das, S., Kondo, H., Suzuki, N. A transfectable fusagravirus from Cryphonectria carpinicola with sphericalparticles. 5th mycovirus symposium, Gargnano, Italy, May 30-June 2, 2022.
（6） Sato, Y., Suzuki, N. Argonaute-independent antiviral RNA interference in the chestnut blight fungus, Cryphonectria
parasitica. 5th mycovirus symposium, Gargnano, Italy, May 30-June 2, 2022.
（7） Shahi, S., Chiba, S., Takaki, Y., Suzuki, N. Low-level IRES activity likely contributes to the replication restriction ofCryphonectria hypovirus 1 in Cryphonectria carpinicola. 5th mycovirus symposium, Gargnano, Italy, May 30-June 2,
2022.
（8） Telengech, P., Sato, Y., Shahi, S., Hisano, S., Cornejo, C., Rigling, D., Kondo, H., Suzuki, N. A new tetra-segmented
splipalmivirus with divided RdRP domains from Cryphonectria naterciae, a fungus found on chestnut and cork oaktrees in Europe. 5th mycovirus symposium, Gargnano, Italy, May 30-June 2, 2022.
（9） Zahid, Z., Cohen, A. B., Suzuki, N., Hillman, B. I. Synonymous codon usage bias in Cryphonectria parasitica viruses:
Insights on evolution and host adaptation. 5th mycovirus symposium, Gargnano, Italy, May 30-June 2, 2022.
（10）Kubo, H., Sato, I., Takemoto, D., Suzuki, N., Chiba, S. The internal ribosome entry site of Cryphonectria hypovirus 1
contributes to the viral viability. 5th mycovirus symposium, Gargnano, Italy, May 30-June 2, 2022.
（11）Hyodo, K. A virus infection modulates plant immunity against bacterial and fungal pathogens. 12th Japan-US seminar in
Plant Pathology, NY, USA, Aug. 29- Sep. 2, 2022.
（12）Hatvani, L., Kondo, H., Shahi, S., Suzuki, N., Grogan, H. Mycoviruses: A novel approach for controlling mushroom
pathogenic fungi. Power of Fungi and Mycotoxins in Climate Change (imi.hr), Koprivnica, Croatia (Online), Sep. 1617, 2022.

植物・昆虫間相互作用グループ (Group of Plant-Insect Interactions)（1） Galis, I., Kuwabara, T., Hojo, Y., Wari, D., Shinya, T. Systemic defense against herbivores in rice: Not really the case. 3rd
ISCE-APACE Joint Meeting, Kuala Lumpur, Malaysia (Online), Aug. 8-12, 2022.

33

（2） Wari, D., Hojo, Y., Tani, A., Shinya, T., Galis, I. Brown planthopper honeydew-associated microbes and their role in rice
defense; a laboratory and field approach. 3rd ISCE-APACE Joint Meeting, Kuala Lumpur, Malaysia (Online), Aug.
8-12, 2022.
（3） Osibe, D. A., Hojo, Y., Shinya, T., Galis, I. Dynamics of Silicification and the Role of Silicon in Rice Defense against
Chewing and Sucking Herbivores. 3rd ISCE-APACE Joint Meeting, Kuala Lumpur, Malaysia (Online), Aug. 8-12,2022.

植物免疫デザイングループ (Plant Immune Design Group)（1） Fukada, F., Guo, T., Wang, W., Nishimura, H., Ono, N., Minakuchi, Y., Toyoda, A., Kawano, Y. A secreted RALF peptide
modulates rice immune response upon Magnaporthe oryzae infection. 12th Japan-US Seminar in Plant Pathology,
Ithaca, NY, USA, Aug. 28-Sep. 2, 2022.

植物環境微生物学グループ (Group of Plant Environmental Microbiology)（1） Wari, D., Hojo, Y., Tani, A., Shinya, T., Galis, I. Brown planthopper honeydew-associated microbes and their role in rice
defense; a laboratory and field approach. 3rd ISCE-APACE Joint Meeting, Kuala Lumpur, Malaysia, Aug. 8-12, 2022.
（2） Kishiro, K., Saisho, D., Yamashita, J., Yamaji, N., Yamamoto, T., Monden, Y., Mochida, K., Nakagawa, T., Tani, A.
Identification and characterization of barley root endophytic microorganisms. International Society of Microbial
Ecology 18, Lausanne, Switzerland, Aug. 14-19, 2022.
（3） Tani, A., Iga, T., Haruna, Y., Kikuchi, S., Masuda, S., Fujitani, Y., Kato, J. Metabolism-linked methanol chemotaxis in
Methylobacterium aquaticum strain 22A. International Society of Microbial Ecology 18, Lausanne, Switzerland. Aug.
14-19, 2022.
（4） Juma, P., Fujitani, Y., Alessa, O., Oyama, T., Yurimoto, H., Sakai, Y., Tani, A. Role of a siderophore in Methylobacterium
aquaticum strain 22A. IPSR International Web Forum on Plant Stress Science by Early-Career Scientists 2022,
Kurashiki, Japan, Sep. 14, 2022.

遺伝資源ユニット (Genetic Resources Unit)
ゲノム多様性グループ (Group of Genome Diversity)（1） Hisano, H. Enhanced tolerance to pre-harvest sprouting by targeted mutagenesis of grain dormancy genes in barley.
Advances in Barley Genomics and Genetics (workshop), Plant and Animal Genome Conference (PAG ASIA 2022)
China (Online), June 22-24, 2022.
（2） Saito, A., Hisano, H., Ohyama, T., Higuchi, K. Multiple physiological mechanisms and factors responsible for proper
photosynthesis in barley under iron-deficient conditions. The 20th International Symposium on Iron Nutrition andInteractions in Plants (ISINIP), Reims, France, July 4-8, 2022.
（3） Hisano, H., Sato, K. National Bioresource Project -Barley-, Resources for understanding barley genome diversity. The
13th International Meeting of Asian Network of Research Resource Centers (ANRRC 2022), Japan (Online), Nov. 8-9,2022.

ゲノム育種ユニット (Applied Genomics Unit)
遺伝資源機能解析グループ (Group of Genetic Resources and Functions)（1） Nakamura, K., Kikuchi, Y., Shiraga, M., Kotake, T., Taketa, S., Ikeda, Y. Functional characterization of a putative
epigenetic regulator that affects awn elongation in barley. CSHA meeting on Integrative Epigenetics in Plants,
Awaji, Japan, Dec. 12-15, 2022.

統合ゲノム育種グループ (Group of Integrated Genomic Breeding)（1） Furuta, T., Yamamoto, T. Pipeline for accurate Genotype-by-Sequencing via eliminating error prone markers. The 19thInternational Symposium on Rice Functional Genomics, Thailand, Nov. 4-7, 2022.

34

次世代作物共同研究コア (Research Core for Future Crops)
フィールドフローラ研究チーム (Field Flora Research Team)（1） Kishiro, K., Saisho, D., Yamashita, J., Yamaji, N., Yamamoto, T., Monden, Y., Mochida, K., Nakagawa, T., Tani, A.
Identification and characterization of barley root endophytic microorganisms. International Society of Microbial
Ecology 18, Lausanne, Switzerland, Aug. 14-19, 2022.

RECTOR プログラム (RECTOR Program)（1） Ozawa, S. I., Takagi, M., Vidal-Meireles, A., Buchert, F., Hippler, M., Takahashi, Y. Effects of the LHCA3 or LHCA7subunit deletion on the structure and function of the Photosystem I Light-Harvesting Complex I in the green alga
Chlamydomonas reinhardtii. International Congress on Photosynthesis Research 2022, Ōtepoti dunedin, Aotearoa
New Zealand (Hybrid), July 31-Aug. 5, 2022.
（2） Hippler, M. New insights into a dimeric PSI structure, a high resolution model of PSI: plastocyanin complex and PSI
dependent hydrogen production. International Congress on Photosynthesis Research 2022, Ōtepoti dunedin,
Aotearoa New Zealand (Hybrid), July 31-Aug. 5, 2022.
（3） Hippler, M. European Bioenergetics Conference, EBEC2022, Aix-en-Provence, France, Aug. 20-25, 2022.
（4） Hippler, M., Mosebach, L., Thu, H. H. T., Younas, M., Buchert, F., Scholz, M., Takahashi, Y., Elman, T., Yacoby, I.,
Nachberger, A., Amunts, A. Dynamic remodeling of photosystem I with implications in structure and function.
International Symposium on Photosynthesis and Chloroplast Regulation, Kobe, Hyogo, Japan, Nov. 15-18, 2022.
（5） Ozawa, S. I., Buchert, F., Reuys, R., Hippler, M., Takahashi, Y. The algal PETC-Pro171-Leu suppresses electron transfer
in the cytochrome b6 f complex under acidic lumenal condition. International Symposium on Photosynthesis andChloroplast Regulation, Kobe, Hyogo, Japan, Nov. 15-18, 2022.

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講演およびシンポジウム発表(List of Domestic Conferences and Symposia)
大気環境ストレスユニット (Atmospheric Stress Unit)
光環境適応研究グループ (Plant Light Acclimation Research Group)（1） 松島 良 澱粉粒の形状多様性とオオムギの種子澱粉改変に向けての取り組み．第 2 回植物研究拠点アライアンス公
開シンポジウム，オンライン，1 月 27 日，2022.
（2） 松島 良・久野 裕・Ivan Galis・竹中悠人・追留那緒子・石水 毅・藤田直子・佐藤和広 種子中の澱粉量が減少し，糖を高蓄積するオオムギ変異体の作出．日本育種学会第 141 回講演会，大阪（オンライン），3 月 20-21 日，2022．
（3） 高梨秀樹・鐘ケ江弘美・西村明日香・山田淳子・石森元幸・小林正明・矢野健太郎・岩田洋佳・堤 伸浩・坂本 亘
ソルガムにおける優性芒抑制遺伝子 DAI の同定．日本育種学会第 141 回講演会，大阪（オンライン），3 月 20-21
日，2022．
（4） Wacera, F. W., Yamazaki, K., Takanashi, H., Fujiwara, T., Tsutsumi, N., Sakamoto, W. Mapping and characterization of
QTLs for sorghum seed ionome reveals differential cadmium accumulation in a recombinant inbred population．第63 回日本植物生理学会，つくば（オンライン），3 月 22-24 日，2022．
（5） 小川 由・田草川真理・岩野 惠・彭 连伟・明賀史純・鹿内利治・坂本 亘 シロイヌナズナ FZL タンパク質によるグラナマージンにおけるチラコイド膜リモデリングの生理機能．第 63 回日本植物生理学会，つくば（オンライン），3 月 22-24 日，2022．
（6） 桶川友季・本橋 健・坂本 亘 PGR5 の欠損はフェレドキシンからの電子の流れを変えることによって ntrc 変異株の生育阻害を回復させる．第 63 回日本植物生理学会，つくば（オンライン），3 月 22-24 日，2022．
（7） Sakamoto, W. The changing landscape of peer-review. 第 63 回日本植物生理学会，つくば（オンライン），3 月 22-24 日，
2022．
（8） 高見常明・Islam Md. Faridul・坂本 亘 オルガネラ DNA 分解の異常はオートファジー変異体の早枯れ表現型を抑制する．第 63 回日本植物生理学会，つくば（オンライン），3 月 22-24 日，2022．
（9） 小川 由 チラコイド膜グラナマージンに局在する膜リモデリング因子 FZL の機能解析．第 12 回日本光合成学会年会
およびシンポジウム，オンライン，5 月 20-21 日，2022．
（10）桶川友季 f 型と m 型チオレドキシンの光合成制御における機能分担．第 12 回日本光合成学会年会およびシンポジ
ウム，オンライン，5 月 20-21 日，2022．
（11）坂本 亘 葉緑体膜の維持に関わる VIPP1 タンパク質の解析．第 12 回日本光合成学会年会およびシンポジウム，オン
ライン，5 月 20-21 日，2022．
（12）在間玄香・井上 博・久野 裕・松島 良・小林括平・山岡直人・中神弘史・八丈野孝 オオムギうどんこ病菌侵入細胞におけるプラスチド崩壊メカニズムの解析．日本植物学会第 86 回大会，京都，9 月 15-19 日，2022．
（13）松島 良・久野 裕・Ivan Galis・三浦聡子・クロフツ尚子・追留那緒子・藤田直子・佐藤和広 オオムギ多重変異体を用いた澱粉関連遺伝子の遺伝的相互作用解析．第 17 回ムギ類研究会，つくば，12 月 16-17 日，2022.

環境応答機構研究グループ (Group of Environmental Response Systems)（1） 平山隆志・最相大輔・井藤 純・服部公央亮・岡田聡史・池田陽子・梅崎太造・辻 寛之・持田恵一 ライフコースデー
タを用いたデータ科学に基づく形質予測モデル構築．日本植物生理学会第 63 回大会，つくば（オンライン），3
月 22-24 日，2022.
（2） 持田恵一・金 俊植・高萩航太郎・金谷麻加・井上小槙・上原由紀子・清水みなみ・最相大輔・井藤 純・服部公央亮・
岡田聡史・池田陽子・梅崎太造・辻 寛之・平山隆志 ディープフェノタイピングによるオオムギの成長トラジェ
クトリの多様性の解明．日本植物生理学会第 63 回大会，つくば（オンライン），3 月 22-24 日，2022.
（3） 井藤 純・野村有子・高萩航太郎・岡田聡史・久下修平・佐藤奈緒・新井駿一・松本大輝・杉村みどり・関 緑・服部公央亮・
梅崎太造・池田陽子・最相大輔・持田恵一・平山隆志・辻 寛之 形質予測モデル構築にむけた茎頂メリステ
ムの連続的な発生ステート推移の解明．日本植物生理学会第 63 回大会，つくば（オンライン），3 月 22-24 日，
2022.
（4） Sorokin, A., Hirayama, T. Diversity of FEP/IMA genes across higher plants. 日本植物生理学会第 63 回大会，つくば（オンライン），3 月 22-24 日，2022．
（5） 佐々木孝行・有吉美智代・山本洋子・森 泉 ALMT リンゴ酸輸送体による気孔閉口メカニズムの解析．日本植物生理学会第 63 回大会，つくば（オンライン），3 月 22-24 日，2022.
（6） 銀 叶・佐々木孝行・中村宜督・宗正晋太郎・村田芳行・森 泉 ジャスモン酸メチル誘導性気孔閉口への PYL5 およ
び PYL8 ABA 受容体の関与．日本植物生理学会第 63 回大会，つくば（オンライン），3 月 22-24 日，2022.
（7） Ooi, L., Filleur, S., Mori, I. C. Cytosolic pH homeostasis protests guard cells from SO2-induced cell death. 日本植物生理学会第 63 回大会，つくば（オンライン），3 月 22-24 日，2022.
（8） 平田峻也・大河優奈・池田陽子・高橋広夫・西村泰介・町田千代子・小林括平・賀屋秀隆 シロイヌナズナにおける36

CRISPR/Cas9 システムを用いた DNA メチル化 編集技術の開発．日本植物生理学会第 63 回大会，つくば（オンライン），3 月 22-24 日，2022．
（9） 中村光希・十川太輔・西浜竜一・山岡尚平・荒木 崇・河内孝之・大和勝幸・平山隆志・池田陽子 ゼニゴケにおける植物型 DNA 脱メチル化酵素の機能解析．第 15 回日本エピジェネティクス研究会年会，福岡，6 月 9-10 日，
2022.
（10）間宮章仁・大塚蔵嵩・山本荷葉子・小林健人・八木祐介・中村崇裕・平山隆志・深城英弘・杉山宗隆 植物ミトコン
ドリアにおけるシトクロム C 成熟に関わる mRNA 編集とポリ A 付加の関係性について．日本植物学会第 86 回
大会，京都，9 月 15-19 日，2022.
（11）池 田 陽 子・ 中 村 光 希・ 十 川 太 輔・ 西 浜 竜 一・ 山 岡 尚 平・ 荒 木 崇・ 河 内 孝 之・ 大 和 勝 幸 ゼ ニ ゴ ケ MpROS1a，
MpROS1x による DNA 脱メチル化制御．日本植物学会第 86 回大会，京都，9 月 15-19 日，2022.
（12）中村光希・菊池優一・白神美瑞穂・小竹敬久・武田 真・池田陽子 オオムギの芒形成に関わるエピゲノム制御因子の解析．日本植物学会第 86 回大会，京都，9 月 15-19 日，2022．
（13）森 愛理・Valerie Gaudin・松浦恭和・池田陽子・田村謙太郎 防御応答を制御する核輸送因子インポーチンα．日本
植物学会第 86 回大会，京都，9 月 15-19 日，2022.
（14）井藤 純・佐藤奈緒・野村有子・新井駿一・高萩航太郎・岡田聡史・武田（神谷）紀子・豊岡公徳・最相大輔・平山隆志・
持田恵一・辻 寛之 オオムギのユニークな花序構造に関する遺伝子発現解析．日本育種学会第 142 回大会，帯広，
9 月 23-25 日，2022．
（15）福嶋七海・松浦恭和・門田有希・西田英隆・平山隆志・加藤鎌司 オオムギ匍匐性は作用が異なる 3 つの QTL が制御する複合形質である．日本育種学会第 142 回大会，帯広，9 月 23-25 日，2022.
（16）池田陽子 植物におけるエピゲノム制御．植物科学フロンティア研究会 2022，岡山，9 月 23-25 日，2022．
（17）池田陽子・中村光希・十川太輔・西浜竜一・山岡尚平・荒木 崇・河内孝之・Mathieu Olivier・大和勝幸 植物における DNA メチル化制御システムの変化：苔類ゼニゴケを例に . 第 45 回日本分子生物学会年会ワークショップ
ʻ 分子 − 自然集団のスケールから見えてくる頑強かつ柔軟なエピジェネティクス ʼ，千葉，11 月 30 日 -12 月 2 日，
2022.
（18）中村光希・菊池優一・白神美瑞穂・武田 真・池田陽子 オオムギの芒形成に関わる推定エピゲノム制御因子の解析．
NGS 発生生物学現場の会 2022，岡崎，12 月 6-7 日，2022.

環境機能分子開発グループ (Group of Functional Biomolecular Discovery)（1） 鈴木克周・清川一矢・谷 明生・力石和英 コムギの根から単離したアグロバクテリア菌株 NR3 の特性とゲノム．第7 回デザイン生命工学研究会，岩手（オンライン），3 月 10 日，2022.
（2） 氷見英子・栗原志保・安倍史高・高橋秀和・田中啓介・松浦恭和・前川雅彦・力石和英 コムギ種子休眠に関わる
lipid transfer protein 遺伝子について．日本育種学会第 141 回講演会，大阪（オンライン），3 月 20-21 日，2022.
（3） 近藤雄基・力石和英・杉本 学 酸化ヌクレオチド消去に関与するイネ Nudix hydrolase の探索．日本宇宙生物科学会
第 36 回大会，名古屋（オンライン），9 月 16-18 日，2022.
（4） 力石和英・小野蒼生・前川雅彦・杉本 学 イネアルビノ様葉緑素変異体 pyl-stb の幼苗致死性に関する光応答制御機
構の解析．日本育種学会第 142 回講演会，帯広，9 月 23-25 日，2022.

土壌環境ストレスユニット (Soil Stress Unit)
植物ストレス学グループ (Group of Plant Stress Physiology)（1） 馬 建鋒 作物のミネラル輸送機構に関する研究．日本植物生理学会賞受賞講演，第 63 回日本植物生理学会年会，つくば（オンライン），3 月 22-24 日，2022.
（2） Che, J., Yamaji, N., Miyaji, T., Mitani-Ueno, N., Kato, Y., Shen, R. F., Ma, J. F. Node-localized transporters of Phosphorus
Essential for Seed Development in Rice. PCP Best Paper Award, 第 63 回日本植物生理学会年会，つくば（オンライン），3 月 22-24 日，2022.
（3） 小西範幸・馬 建鋒 イネケイ酸輸送体 Lsi1 の偏在は複数領域によって制御される．第 63 回日本植物生理学会年会，
つくば（オンライン），3 月 22-24 日，2022.
（4） Huang, S., Konishi, N., Yamaji, N., Mitani-Ueno, N., Ma, J. F. Regulation mechanism of boron uptake in rice. 第 63 回日本
植物生理学会年会，つくば（オンライン），3 月 22-24 日，2022.
（5） 黄 勝・山地直樹・櫻井 玄・三谷奈見季・小西範幸・馬 建鋒 イネの根における効率的なケイ酸ローディングに寄与する輸送体 Lsi3．第 63 回日本植物生理学会年会，つくば（オンライン），3 月 22-24 日，2022.
（6） 井上晋一郎・林 真妃・黄 勝・横正健剛・後藤栄治・池松朱夏・奥村将樹・鈴木孝征・木下俊則・馬 建鋒 新奇液胞
膜型マグネシウム輸送体の気孔開口への関与．第 63 回日本植物生理学会年会，つくば（オンライン），3 月 22-24 日，
2022.

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（7） 三谷奈見季・山地直樹・吉岡佑真・宮地孝明・馬 建鋒 イネの SIET4 輸送体は細胞特異的ケイ素蓄積に関与する．第63 回日本植物生理学会年会，つくば（オンライン），3 月 22-24 日，2022.
（8） 山地直樹・藤井理樹・三谷奈見季・馬 建鋒 蛍光染色によるイネ葉のケイ素蓄積過程の解析．日本土壌肥料学会
2022 年度東京大会，東京，9 月 13-15 日，2022.
（9） 黄 勝・山地直樹・馬 建鋒 OsZIP2 mediates xylem loading and preferential distribution of Zn in rice. 日本土壌肥料学会 2022 年度東京大会，東京，9 月 13-15 日，2022．
（10）余 恩・山地直樹・馬 建鋒 Duplication of a manganese/cadmium transporter gene leads to low cadmium accumulationin rice grain. 日本土壌肥料学会 2022 年度東京大会，東京，9 月 13-15 日，2022．
（11）王 珮同・馬 建鋒 Identification and functional characterization of a gene responsible for differential As accumulation inrice roots. 日本土壌肥料学会 2022 年度東京大会，東京，9 月 13-15 日，2022．
（12）黄 衡亮・久野 裕・黄 勝・三谷奈見季・佐藤和広・山地直樹・馬 建鋒 Identification of a gene involved in loading
phosphorus into barley grains. 日本土壌肥料学会 2022 年度東京大会，東京，9 月 13-15 日，2022.
（13）張 乾・古田智敬・柏原壱成・小川大輔・米丸淳一・馬 建鋒・山本敏央 イネ多系交雑集団を用いたワラと玄米の元素含量に関する GWAS 解析．日本育種学会 142 回講演会，帯広，9 月 23-24 日，2022.

植物分子生理学グループ (Group of Plant Molecular Physiology)（1） Sasaki, T., Ariyoshi, M., Yamamoto, Y., Mori, I. C. Analyses of stomatal closure mediated by ALMT-type malatetransporters. 第 63 回日本植物生理学会，つくば（オンライン），3 月 22-24 日，2022.
（2） Yin, Y., Sasaki, T., Nakamura, Y., Munemasa, S., Murata, Y., Mori, I. C. Involvement of PYL5 and PYL8 ABA receptors
on methyl jasmonate induced stomatal closure. 第 63 回日本植物生理学会，つくば（オンライン），3 月 22-24 日，
2022.
（3） 佐藤良介・鈴木孝征・朝比奈雅志・堀部貴紀・柘植尚志・且原真木・前島正義 サボテンの高い環境耐性に対するア
クアポリンの生理的役割の解明．第 63 回日本植物生理学会，つくば（オンライン），3 月 22-24 日，2022.
（4） 宇都木繁子・且原真木 シロイヌナズナ液胞膜型アクアポリン AtTIP3 ファミリーの水輸送活性の制御．第 63 回日本
植物生理学会，つくば（オンライン），3 月 22-24 日，2022.
（5） 中嶋智子・丸山隼人・氷見英子・山本洋子・佐々木孝行 コムギの根端における TaALMT1 輸送体タンパク質の安定的発現機構の解析．日本土壌肥料学会 2022 年度大会，東京，9 月 13-15 日，2022.
（6） 坂口文香・丸山隼人・佐々木孝行・西田 翔・和崎 淳・信濃卓郎・渡部敏裕 アルミニウム集積植物メラストーマにおける FRD3 タイプ MATE のアルミニウム輸送への関与．日本土壌肥料学会 2022 年度大会，東京，9 月 13-15 日，
2022.
（7） 我妻忠雄・田原 恒・且原真木・土屋善幸・俵谷圭太郎 鉄との協同による植物の新規な根圏改変機能 − 根圏フェントン反応による有機環境の改変・ストレスの回避①．日本土壌肥料学会 2022 年度大会，東京，9 月 13-15 日，
2022.
（8） 且原真木・Sen Tran・堀江智明 イネにおけるイオン輸送性アクアポリンの同定と機能解析．日本植物学会第 86 回
大会，京都，9 月 15-19 日，2022.
（9） 大西亜耶・且原真木 塩ストレス初期段階における耐塩性オオムギ K305 の根水透過性（Lpr）下方制御とオオムギア
クアポリン HvPIP2;1 のリン酸化の解析．第 56 回根研究集会，福岡（オンライン）9 月 17-18 日，2022．
（10）Sasaki, T. Functional diversity of ALMT-type malate transpor ters in tomato. 18 th Japan Solanaceae Consor tium
Symposium, Okayama (Okayama University), Oct. 8-9, 2022.

環境生物ストレスユニット (Biotic Stress Unit)
植物・微生物相互作用グループ (Group of Plant-Microbe Interactions)（1） Telengech, P., Ssuzuki, N. Cross-kingdom infection of a bipartite double-stranded RNA virus. FY2021 International
Symposium on Environmental and Life Science, Okayama (Online), Jan. 24, 2022.
（2） Iida, E., Tabara, M., Kuriyama, K., Atsushi Takeda, A., Suzuki, N., Moriyama, H., Fukuhara, T. Effects of T-DNA
structures on the induction of plant gene silencing in agroinfiltration. 第 63 回植物生理学会年会，つくば（オンライン），3 月 22-24 日，2022.
（3） 近藤秀樹・吉田直人・兵頭 究・久野 裕・玉田哲男・鈴木信弘 コムギに感染するベータフレキシ科の新規 RNA ウイ
ルス．令和 4 年度日本植物病理学会大会，札幌（オンライン），3 月 27-29 日，2022．
（4） 佐藤友理沙・水谷行善・神谷萌々子・上坂一馬・Vanshika・佐藤育男・竹本大吾・近藤秀樹・須賀晴久・鈴木信弘・
千葉壮太郎 Fusarium boothii large flexivirus 1 defective RNA による宿主赤カビ病菌病原性の抑制．令和 4 年度
日本植物病理学会大会，札幌（オンライン），3 月 27-29 日，2022．
（5） Sato, Y., Shahi, S., Telengech, P., Hisano, S., Cornejo, C., Rigling, D., Kondo, H., Suzuki, N. A new tetra-segmented

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splipalmivirus with divided RdRP domains from a Portuguese isolate of Cryphonectria naterciae. The Online Annual
Meeting of the Japanese Phytopathological Society, Sapporo (Online), March 27-29, 2022.
（6） 兵頭 究・首藤丘宇・近藤秀樹・鈴木信弘 宿主液胞型 H+-ATPase のハイジャックによるダイアンソウイルスの増殖戦略．
令和 4 年度日本植物病理学会大会，札幌（オンライン），3 月 27-29 日，2022．
（7） 佐藤有希代・近藤秀樹・鈴木信弘 白紋羽病菌で繰り広げられる RNA ウイルスのネオ・ライフスタイル植物病原糸状菌でのウイルスライフスタイルの多様性．第 56 回植物感染生理談話会，仙台，9 月 5-7 日，2022．
（8） 上田 茜・村田佳乃子・佐藤育男・竹本大吾・鈴木信弘・千葉壮太郎 ウイルス由来の IRES を利用した糸状菌での多重遺伝子発現系の構築．令和 4 年度日本植物病理学会関西部会，高知，9 月 21-22 日，2022．
（9） Sato, Y., Hisano, H., Lopez-Hererra, C., Kondo, H., Suzuki, N. Partnership between capsidless (+)ssRNA yadokariviruses
and their host dsRNA viruses: Promiscuous or virtuous? The Annual Meeting of the Kansai Regional Branch ofJapanese Phytopathological Society, Kochi, Sep. 21-22, 2022.
（10）Hatvani, L., Kondo, H., Shahi, S., Hisano, S., Grogan, H., Suzuki, N. Detection of double-stranded RNA elements in thefungal pathogens of mushrooms. The Annual Meeting of the Kansai Regional Branch of Japanese PhytopathologicalSociety, Kochi, Sep. 21-22, 2022.
（11）Fadli, M., Hisano, S., Kondo, H., Suzuki, N. Identification of the new yadonusi and yadokari interplay from Aspergillus
foetidus Japanese strain NBRC 4031. The 36th Annual Meeting of the Chugoku/Shikoku Regional Virology Society,
Tokushima, Oct. 29-30, 2022.

植物・昆虫間相互作用グループ (Group of Plant-Insect Interactions)（1） 網干貴子・一刀皐平・Galis Ivan・新屋友規・村山哲也 食害されたトウモロコシにおける DOPA 配糖体の誘導．日
本農薬学会第 47 回大会，岡山（オンライン），3 月 7-9 日，2022.
（2） 新屋友規・小竹敬久・Galis Ivan 植物の自己損傷感知による昆虫食害認識機構．日本農薬学会第 47 回大会，岡山（オンライン），3 月 7-9 日，2022.
（3） 桑原大芽・北條優子・新屋友規・Galis Ivan イネ葉におけるジャスモン酸を介したシステミックな防御応答．第 63回日本植物生理学会年会，つくば（オンライン），3 月 22-24 日，2022.
（4） Wari David・北條優子・谷 明生・新屋友規・Galis Ivan Characterization of honeydew-associated microbes of brownplanthoppers and their role in rice defense．第 63 回日本植物生理学会年会，つくば（オンライン），3 月 22-24 日，
2022.
（5） 神田恭和・新屋友規・前田 哲・Galis Ivan・鎌倉高志・森 昌樹 イネ複合病害抵抗性遺伝子 BSR1 は食害昆虫に対する防御応答にも関与する．令和 4 年度日本植物病理学会大会，札幌（オンライン），3 月 27-29 日，2022.
（6） 田中未来・遠藤有希子・谷村香織・出崎能丈・小澤理香・Maffei Massimo. E.・新屋友規・Galis Ivan・有村源一郎
ナミハダニの分泌性エリシター「テトラニン」の同定．生物環境イノベーション研究部門 第 3 回シンポジウム，
東京，11 月 22 日，2022.
（7） 吉岡裕司・二宮直也・小倉菜桜・中島 慈・野澤 彰・新屋友規・Galis Ivan・澤崎達也・出崎能丈・有村源一郎
RALF/Malectin 型受容体キナーゼを介した虫害抵抗性シグナル伝達機構の解明．生物環境イノベーション研究部
門 第 3 回シンポジウム，東京，11 月 22 日，2022.
（8） 岡田憲典・宮本皓司・宮崎 翔・新屋友規・Galis Ivan イネの化学防御における環境ストレスセンシング．生物環境
イノベーション研究部門第 3 回シンポジウム，東京，11 月 22 日，2022.
（9） 田中未来・谷村香織・遠藤有希子・出崎能丈・小澤理香・Maffei Massimo. E.・新屋友規・Galis Ivan・有村源一郎
ナミハダニの分泌性タンパク質エリシター「テトラニン」の同定．第 45 回日本分子生物学会年会，千葉，11 月
30 日 -12 月 2 日，2022.

植物免疫デザイングループ (Plant Immune Design Group)（1） 深田史美 病原菌に対する植物の分泌ペプチドを介した防御戦略．令和 3 年度女性研究者シーズ発信会，岡山，3 月 1 日，
2022．
（2） 赤松 明・藤原正幸・濱田 聡・島本 功・河野洋治 The Small GTPase OsRac1 Forms Two Distinct Immune Receptor
Complexes Containing the PRR OsCERK1 and the NLR Pit. 第 63 回日本植物生理学会年会，つくば（オンライン），3 月 22-24 日，2022.
（3） 赤松 明・藤原正幸・濱田 聡・島本 功・河野洋治 OsRac1 は，PRR OsCERK1 と NLR Pit を含む 2 つの免疫受容体複合体を形成する．令和 4 年度日本植物病理学会大会，札幌（オンライン），3 月 27-29 日，2022．
（4） 深田史美・Ting Guo・Wanqing Wang・西村秀希・小野奈津子・水口洋平・豊田 敦・古田智敬・河野洋治 イネ免疫を制御する RALF ファミリーペプチドの機能解析．令和 4 年度日本植物病理学会大会，札幌（オンライン），3
月 27-29 日，2022.
（5） 深田史美・Ting Guo・Pingyu Wang・河野洋治 植物 − 病原糸状菌相互作用における分泌タンパク質・ペプチドの解析．

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令和 4 年度植物感染生理談話会，仙台，9 月 5-7 日，2022．
（6） 深田史美 植物サイトカイン RALFa による免疫制御と病原菌との相互作用．岩手生物工学研究センター所内セミ
ナー，北上，9 月 9 日，2022．
（7） 深田史美 Secreted proteins and peptides used for the interaction between plant cell and plant pathogenic fungi. 第 57
回インターゲノミクスセミナー，神戸，11 月 11 日，2022．

植物環境微生物学グループ (Group of Plant Environmental Microbiology)（1） 鈴木克周・清川一矢・谷 明生・力石和英 コムギの根から単離したアグロバクテリア菌株 NR3 の特性とゲノム．第7 回デザイン生命工学研究会，岩手（オンライン），3 月 10 日，2022.
（2） 高橋莉史・矢野嵩典・中川智行・谷 明生・三井亮司 植物共生メチロトローフ細菌 Methylorubrum extorquens AM1のランタノイドに応答したメタノールデヒドロゲナーゼ XoxF1 の発現調節機構の解析．日本農芸化学会 2022 年度大会，京都（オンライン），3 月 15-18 日，2022.
（3） 森 田 翔 太・ 八 木 茜・ 矢 野 嵩 典・ 谷 明 生・ 中 川 智 行・ 阿 野 嘉 孝・ 三 井 亮 司 グ ラ ム 陽 性 メ チ ロ ト ロ ー フ 細 菌
Arthrobacter sp. YM1 のランタノイド依存的メタノール生育に関する研究．日本農芸化学会 2022 年度大会，京都（オンライン），3 月 15-18 日，2022.
（4） 木代勝元・最相大輔・山下 純・山地直樹・山本敏央・門田有希・持田恵一・中川智行・谷 明生 オオムギ根内生微生物の同定と役割の解明．日本農芸化学会 2022 年度大会，京都（オンライン），3 月 15-18 日，2022.
（5） 菊池志保・藤谷良子・加藤純一・谷 明生 Methylobacterium aquaticum 22A 株におけるメタノール走化性の分子機構の解明．日本農芸化学会 2022 年度大会，京都（オンライン），3 月 15-18 日，2022.
（6） 加地奏絵・川端和弥・片山志織・谷 明生・由里本博也・阪井康能 Methylobacterium sp. OR01 株におけるメタノー
ル走化性に関わる MCP タンパク質の同定．日本農芸化学会 2022 年度大会，京都（オンライン），3 月 15-18 日，
2022.
（7） Wari, D., Hojo, Y., Tani, A., Shinya, T., Galis, I. Characterization of honeydew-associated microbes of brown planthoppers
and their role in rice defense. 第 63 回日本植物生理学会年会，つくば（オンライン），3 月 22-24 日，2022.
（8） 最相大輔・木代勝元・山地直樹・谷 明生 二毛作体系における栽培環境がオオムギ栽培に与える影響．日本育種学会第 142 回講演会，帯広，9 月 23-25 日，2022.
（9） 谷 明生 オオムギの生育促進細菌の発見と応用．JST 新技術説明会，オンライン，9 月 29 日，2022.
（10）久田健司・野村颯人・根本侑知・水野洸介・三井亮司・谷 明生・井口博之・清水将文・島田昌也・中川智行 ラン
タノイド依存型 C1 細菌の植物共生と生育促進技術への応用．日本生物工学会第 74 回大会，オンライン，10 月
17-20 日，2022.
（11）木代勝元・最相大輔・山下 純・山地直樹・山本敏央・門田有希・持田恵一・中川智行・谷 明生 オオムギ根内生微生物の同定と役割の解明．日本微生物生態学会第 35 回大会，札幌，10 月 31 日 -11 月 3 日，2022.
（12）宇佐美文子・小原静夏・隠塚俊満・近藤 健・中嶋昌紀・小池一彦・植木尚子 リン欠乏条件下において Heterosigma
akashiwo が細菌 Vibrio comitans をリン源として利用する機構の解明．日本微生物生態学会年会第 35 回大会，札幌，
10 月 31 日 -11 月 3 日，2022.
（13）高橋莉史・矢野嵩典・谷 明生・中川智行・三井亮司 植物共生メチロトローフ細菌 Methylorubrum extorquens AM1のメタノールデヒドロゲナーゼアイソザイムの発現制御に関わる二成分制御系の解析．日本生物工学会西日本支部大会，高知，11 月 26 日，2022.

遺伝資源ユニット (Genetic Resources Unit)
ゲノム多様性グループ (Group of Genome Diversity)（1） 久野 裕 ゲノム編集技術による高品質オオムギの作出．第 37 回資源植物科学シンポジウム／第 13 回植物ストレス科学研究シンポジウム，岡山大植物研（オンライン），2 月 28 日 -3 月 1 日，2022.
（2） 松島 良・久野 裕・Ivan Galis・竹中悠人・追留那緒子・石水 毅・藤田直子・佐藤和広 種子中の澱粉量が減少し，糖を高蓄積するオオムギ変異体の作出．日本育種学会第 141 回講演会，大阪（オンライン），3 月 20-21 日，2022.
（3） 加星光子・安倍史高・神谷容子・川浦香奈子・久野 裕・佐藤和広 コムギにおける gRNA 発現プロモーターと培養
温度のゲノム編集効率への影響．日本育種学会第 141 回講演会，大阪（オンライン），3 月 20-21 日，2022.
（4） 齋藤彰宏・古幡万由子・久野 裕・大山卓爾・樋口恭子 光合成鉄利用効率「PIUE」はオオムギ光化学系の鉄欠乏適応能を評価できる新たな量的形質である．第 63 回日本植物生理学会年会，つくば（オンライン），3 月 22-24 日，
2022.
（5） 足助聡一郎・庭本大輔・堀江晶子・Analiza Grubanzo Tagle・久野 裕・佐藤和広・土佐幸雄 いもち病菌非病原力遺伝子 PWT7 に対するコムギの抵抗性遺伝子 Rwt7 の単離．令和 4 年度日本植物病理学会大会，札幌（オンライン），3 月 27-29 日，2022.

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（6） 近藤秀樹・吉田直人・兵頭 究・久野 裕・玉田哲男・鈴木信弘 コムギに感染するベータフレキシ科の新規 RNA ウイ
ルス．令和 4 年度日本植物病理学会大会，札幌（オンライン），3 月 27-29 日，2022.
（7） 佐藤和広 遺伝資源のゲノム解析にもとづく育種学の将来．日本育種学会第 63 回シンポジウム，帯広，9 月 23 日，
2022.
（8） 久野 裕・宗森広美・佐藤和広 種子休眠遺伝子に標的変異導入されたオオムギの遺伝子発現解析．日本育種学会第142 回講演会，帯広，9 月 23-24 日，2022.
（9） 森田真帆・佐藤和広 不斉条オオムギのジェノムワイド関連解析．日本育種学会第 142 回講演会，帯広，9 月 23-24 日，
2022.
（10）最相大輔・木代勝元・山地直樹・谷 明生 二毛作体系における栽培環境がオオムギ栽培に与える影響．日本育種学会第 142 回講演会，帯広，9 月 23-24 日，2022.
（11）甲斐浩臣・田中 剛・原口雄飛・轟 貴智・安彦友美・最相大輔 機械脱穀による種子休眠の覚醒に関与するオオムギの遺伝領域解明．日本育種学会第 142 回講演会，帯広，9 月 23-24 日，2022.
（12）松本大輝・井藤 純・新井駿一・野村有子・杉村みどり・佐藤奈緒・関 緑・若崎眞由美・佐藤繭子・武田（神谷）紀子・
宇野何岸・佐藤良勝・最相大輔・豊岡公徳・辻 寛之 オオムギ花序メリステムの細胞死過程における細胞内構
造変化．日本育種学会第 142 回講演会，帯広，9 月 23-24 日，2022.
（13）井藤 純・佐藤奈緒・野村有子・新井駿一・高萩航太郎・岡田聡史・武田（神谷）紀子・豊岡公徳・最相大輔・平山隆志・
持田恵一・辻 寛之 オオムギのユニークな花序構造に関する遺伝子発現解析．日本育種学会第 142 回講演会，帯広，
9 月 23-24 日，2022.
（14）江畑龍太郎・ヤシール シディク・中野正貴・玉置大介・加星光子・安部史高・佐藤和広・西内 巧 コムギ TaNFXL1による赤かび病抵抗性の制御機構の解析．第 4 回北陸線植物バイオサイエンス研究会，金沢，11 月 20 日，2022.
（15）蝶野真喜子・安倍史高・加星光子・佐藤和広 ゲノム編集を利用したコムギの穂発芽耐性の向上．植物化学調節学会，
福井，11 月 25-27 日，2022．
（16）加星光子・安倍史高・蝶野真喜子・久野 裕・佐藤和広 ゲノム編集による TaQsd1 三重変異体の野外栽培での休眠性評価．第 17 回ムギ類研究会，つくば，12 月 16-17 日，2022.
（17）松島 良・久野 裕・Ivan Galis・三浦聡子・クロフツ尚子・追留那緒子・藤田直子・佐藤和広 オオムギ多重変異体を用いた澱粉関連遺伝子の遺伝的相互作用解析．第 17 回ムギ類研究会，つくば，12 月 16-17 日，2022.
（18）吉川貴徳・久野 裕・桧原健一郎・Jilu Nie・田中裕己・伊藤純一・武田 真 オオムギ葉身形成における WOX3 遺伝子の機能解析．第 17 回ムギ類研究会，つくば，12 月 16-17 日，2022.
（19）森田真帆・佐藤和広 オオムギ多重オオムギの不斉条性に関するジェノムワイド関連解析．第 17 回ムギ類研究会，
つくば，12 月 16-17 日，2022.
（20）最相大輔・岡田吉弘 温暖化環境下での安定生産を実現するオオムギ育種の可能性．第 17 回ムギ類研究会，つくば，
12 月 16-17 日，2022.

野生植物グループ (Group of Wild Plant Science)（1） 池田 啓・Polina Volkova・Kendrick L. Marr・Christian Brochman 北太平洋地域におけるイワギキョウ Campanula
lasiocarpa の分布拡大経路の推定．第 21 回日本植物分類学会，東京（オンライン），3 月 4-6 日，2022.
（2） 若林智美・Cathrine K. Skovbjerg・壽崎拓哉・西田帆那・池田 啓・瀬戸口浩彰・川口正代司・Stig U. Andersen・佐藤
修正 ミヤコグサ GF14 遺伝子の開花時期への寄与と進化．第 21 回日本植物分類学会，東京（オンライン），3
月 4-6 日，2022.
（3） 吉原拓郎・辻畑征弥・陶山佳久・廣田 峻・副島顕子・池田 啓・岩崎貴也・竹下香織・Andrey E. Kozhevnikov・Zoya V.
Kozhevnikova・Tian-Gang Gao・Hongfeng Wang・Jae-Hong Pak・Kyung Choi・Young-Tak Im・藤井紀行 満鮮
要素植物タムラソウの分子系統地理学的研究．第 86 回日本植物学会，京都，9 月 15-19 日，2022.
（4） 孫田佳奈・池田 啓・永野 惇・瀬戸口浩彰 日本アルプスにおける高山型ダイモンジソウの系統的起源．第 86 回日本
植物学会，京都，9 月 15-19 日，2022.

ゲノム育種ユニット (Applied Genomics Unit)
遺伝資源機能解析グループ (Group of Genetic Resources and Functions)（1） 武田 真・白神美津穂・大関美香・五月女敏範 オオムギ丸粒突然変異体の遺伝解析．日本育種学会第 141 回大会，
オンライン，3 月 20 日，2022.
（2） 中村光希・菊池優一・白神美瑞穂・小竹敬久・武田 真・池田陽子 オオムギの芒形成に関わるエピゲノム制御因子の解析．日本植物学会第 86 回大会，京都，9 月 15-19 日，2022.
（3） 吉川貴徳・久野 裕・桧原健一郎・Jilu Nie・田中裕己・伊藤純一・武田 真 オオムギ葉身形成における WOX3 遺伝子の機能解析．第 17 回ムギ類研究会，つくば，12 月 16-17 日，2022.

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（4） 中村光希・菊池優一・白神美瑞穂・武田 真・池田陽子 オオムギの芒形成に関わる推定エピゲノム制御因子の解析．
NGS 発生生物学現場の会 2022，岡崎，12 月 16-17 日，2022．
（5） 武田 真 イネ科作物の穂先突起の形態を制御する遺伝子．岡山大学植物研共同研究拠点ワークショップ，オンライン，
12 月 21 日，2022.

統合ゲノム育種グループ (Group of Integrated Genomic Breeding)（1） 古田智敬・芦苅基行・山本敏央 他殖性作物の多系交雑集団にも対応した遺伝子型データエラー修正ツール「GBScleanR」の開発．日本育種学会 141 回講演会，オンライン，5 月 13 日，2022.
（2） 山本敏央・古田智敬・柏原壱成・張 乾・野々上慈徳・小川大輔・米丸淳一 イネ MAGIC 集団の複数環境栽培から算出した発育速度に関するパラメータの GWAS 解析．日本育種学会 142 回講演会，帯広，9 月 23-24 日，2022．
（3） 張 乾・古田智敬・柏原壱成・小川大輔・米丸淳一・馬 建鋒・山本敏央 イネ多系交雑集団を用いたワラと玄米の元素含量に関する GWAS 解析．日本育種学会 142 回講演会，帯広，9 月 23-24 日，2022.
（4） 岡 大晴・古田智敬・柏原壱成・貴島裕治・山本敏央 O. sativa と O. glaberrima の稔実 4 倍体雑種後代を用いた農業
形質に関する遺伝解析．日本育種学会 142 回講演会，帯広，9 月 23-24 日，2022.
（5） 石原 萌・國吉大地・小出陽平・長岐清孝・貴島裕治 アジアイネとアフリカイネの種間雑種における免疫染色法を用いた減数分裂異常の検出．日本育種学会 142 回講演会，帯広，9 月 23-24 日，2022.
（6） 古田智敬・鳥羽大陽・貴島裕治・山本敏央 次世代シークエンスを用いたジェノタイピングにおける比較ゲノム情報に基づく誤判定の低減法．日本育種学会 142 回講演会，帯広，9 月 23-24 日，2022．
（7） 古田智敬 Pipeline for accurate genotype calling via eliminating error prone markers．第 18 回日本ナス科コンソーシ
アム年会，岡山，10 月 8-9 日，2022.
（8） 長岐清孝・鳴坂真理・鳴坂義弘 南西諸島に自生する Alpinia 属植物の核型解析．染色体学会第 73 回年会，オンライン，
10 月 14-16 日，2022.

次世代作物共同研究コア (Research Core for Future Crops)
フィールドフローラ研究チーム (Field Flora Team)（1） 木代勝元・最相大輔・山下 純・山地直樹・山本敏央・門田有希・持田恵一・中川智行・谷 明生 オオムギ根内生微生物の同定と役割の解明．日本農芸化学会 2022 年度大会，京都（オンライン），3 月 15-18 日，2022．
（2） 最相大輔・木代勝元・山地直樹・谷 明生 二毛作体系における栽培環境がオオムギ栽培に与える影響．日本育種学会第 142 回講演会，帯広，9 月 23-25 日，2022．
（3） 谷 明生 オオムギの生育促進細菌の発見と応用．JST 新技術説明会，オンライン，9 月 29 日，2022．
（4） 木代勝元・最相大輔・山下 純・山地直樹・山本敏央・門田 有希・持田恵一・中川智行・谷 明生 オオムギ根内生微生物の同定と役割の解明．日本微生物生態学会第 35 回大会，札幌，10 月 31 日 -11 月 3 日，2022.

RECTOR プログラム (RECTOR Program)（1） 小澤真一郎・髙木理世・高橋裕一郎 LHCA3 または LHCA7 欠損株における PSI-LHCI の生化学的解析．第 15 回ク
ラミドモナス研究会，倉敷（オンライン），3 月 5 日，2022.
（2） 黒田洋詩・小澤真一郎・濱尾志乃・高橋裕一郎 緑藻クラミドモナス cpSRP は cpSRP43 と cpSRP54 から構成され，ALB3.1 を介してチラコイド膜に結合する．第 63 回日本植物生理学会，つくば（オンライン），3 月 22-24 日，
2022.
（3） 小澤真一郎・ブッハート フェリックス・ルイス ルビー・ヒップラー ミヒャエル・高橋裕一郎 緑藻クラミドモナスのシトクロム b6 f の PETC-171-Pro を Leu に置換した変異株はルーメン酸性下条件で電子伝達速度を強く抑制す
る．第 63 回日本植物生理学会，つくば（オンライン），3 月 22-24 日，2022.
（4） 小澤真一郎・Felix Buchert・Ruby Reuys・Michael Hippler・高橋裕一郎 緑藻クラミドモナスのシトクロム b6 f のPETC-Pro171-Leu 変異株解析．第 12 回日本光合成学会年会，横浜（オンライン），5 月 20-21 日，2022.
（5） 田辺初希・小澤真一郎・川本晃大・田中秀明・高橋裕一郎・栗栖源嗣 緑藻クラミドモナス由来シトクロム b6 f 複合体のクライオ電子顕微鏡構造が示す Rieske 鉄硫黄蛋白質の機能的構造変化．第 60 回日本生物物理学会年会，函館，9 月 28 -30 日，2022.

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研究所員が主催したシンポジウム等(List of Symposium Superintended by the Member of Institute)
第 37 回資源植物科学シンポジウム及び第 13 回植物ストレス科学研究シンポジウム－夢が広がる新植物の作出へ－
日時：2022 年 2 月 28 日，3 月 1 日
場所：オンライン
オーガナイザー：馬 建鋒（岡山大学・植物研）
2 月 28 日
１．植物ゲノム編集技術の新展開と未来への可能性
刑部祐里子（東京工業大学）
２．GABA 高蓄積トマト：我が国初のゲノム編集作物の開発と社会実装
江面 浩（筑波大学）
３．ゲノム編集技術による高品質オオムギの作出
久野 裕（岡山大学・植物研）
４．『花き』がより魅力的になるようなゲノム編集の利用について
佐々木克友（農研機構）
５．ジャガイモにおけるゲノム編集技術の現状と今後の応用展開
村中俊哉（大阪大学）
６．異科接木で広げる植物科学と植物資源の利用
野田口理孝（名古屋大学）
７．ジャポニカイネ由来の複数除草剤耐性遺伝子の発見とその利用
戸澤 譲（埼玉大学）
3月1日
８．新しいイネの創造を目指して：低分子量 G タンパク質 OsRac1 によるイネ免疫の制御機構の解明
河野洋治（岡山大学・植物研）
９．ネオウイルス学から見える植物糸状菌病ヴァイロコントロールの可能性
鈴木信弘（岡山大学・植物研）
10．脱炭素社会構築に向けた実効性のある植物研究とは：エネルギー作物ソルガムの例
佐塚隆志（名古屋大学）
11．イネのいもち病抵抗性：paired NLR 遺伝子の機能と進化
寺内良平（京都大学）

第 5 回植物病理を紡ぐ会
日程：2022 年 3 月 26 日
場所：オンライン
オーガナイザー：浅井秀太（理化学研究所）・鵜家綾香（国際農研）
深田史美（岡山大学・植物研）・峯 彰（京都大学）
招待講演
１．ナス科植物の免疫受容体ネットワークの進化と制御機構の解明に向けて
安達広明（奈良先端大学）
２．植物病理研究の幅広さ ～大地から天空へ～
丹羽昌信（ホクレン農業協同組合連合会）
３．植物病原真菌のゲノム情報の取得と活用
津島綾子（ジョン・イネス・センター）
４．箱入り研究者，「愛ある世界」を知る
小松 健（東京農工大学）
５．感染の成否を担う物質を追って
白石友紀（岡山大学）

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The Fifth International Mycovirus Symposium
May 30-June 2, 2022
Venue: Gargnano, Italy
Organizers: Emanuela Gobbi (University of Brescia, Italy), Bradley Hillman (Rutgers University, UAS),
Daohong Jiang (Huazhong Agricultural University, China), Claudio Ratti (University of Bologna, Italy),
Nobuhiro Suzuki (IPSR, Okayama University), Massimo Turina (IPSP-CNR, Italy)
OPENING LECTURE
Anti-prion systems in yeast cooperate to cure or prevent the generation of nearly all prions
Moonil Son and Reed B. Wickner
MYCOVIRUS BIODIVERSITY I
Metatranscriptomic mining of RNA Viruses provides a community-wide resource
Uri Neri, Yuri I. Wolf, Simon Roux, Antonio Pedro Camargo, Benjamin Lee, Darius Kazlauskas, I. Min Chen, Natalia
Ivanova, Lisa Zeigler Allen, David Paez-Espino, Donald A. Bryant, Devaki Bhaya, RNA Virus Discovery Consortium,
Mart Krupovic, Valerian V. Dolja, Nikos C. Kyrpides, Eugene V. Koonin, Uri Gophna
Investigating the mycoviruses infecting the obligatory biotroph oomycetes Bremia lactucae
M. Forgia, M. Chiapello, S. Daghino, M. Turina
Fusagraviruses in Cryphonectria species
Carolina Cornejo, Sandra Gaehwiler, Wajeeha Shamsi, Hideki Kondo, Nobuhiro Suzuki, Daniel Rigling
Czech populations of Heterobasidion harbor taxonomically diverse single-stranded RNA viruses
László Benedek Dálya, Leticia BotellaHigh frequent co-infection of mycoviruses among strains of Botrytis cinerea isolated from Israel
Jie Duan, Jialing Xu, Anmeng Zhang, Yuduo Yao, Xin Luo, Xiaojing Kong, Yang Lin, Jiatao Xie, Jiasen Cheng, Bo Li,
Tao Chen, Yanping Fu, Amir Sharon, Daohong Jiang
Polymycoviruses in fungal endophytes isolated from vines of exception
Augustine Jaccard, Isabelle Kellenberger, Mathieu Mahillon, Dominique Sanglard, Sylvain Schnee, Katia Gindro,
Olivier SchumppʻPhytophthora palustris complexʼ harbors a highly diverse virome in its natural environment
Leticia Botella, Marilia Horta Jung, Michael Rost, Thomas Jung
Extreme diversity of mycoviruses present in four isolates of Rhizoctonia cerealis, the pathogen of wheat sharp eyespot
Wei Li, Haotian Zhang, Haiyan Sun, Shulin Cao, Huaigu Chen
Mycovirus screening of a collection of Botryosphaeriaceae isolates involved in grapevine trunk diseases
Armelle Marais, Gwenaelle Comont, Chantal Faure, Thierry Candresse, Aurélien Bulme, Sébastien Gambier, Marie
Lefebvre, Marie-France Corio-Costet
MYCOVIRUS AND HYPOVIRULENCE
Exploration of mycoviruses-mediated hypovirulent strain as plant vaccine to control fungal diseases of field crops
Daohong Jiang, Jiatao Xie, Jiasen Cheng, Bo Li, Yanping Fu
Mycovirome analysis explores a unique RNA mycovirus in a hypovirulent strain of Sclerotinia sclerotiorum
Zhijun Liu, Qiangqiang Pan, Dan Zheng, Yanping Fu, Jiasen Chen, Yang Lin, Daohong Jiang, Jiatao Xie
Identification of the viral determinant of hypovirulence and host range in sclerotiniaceae of a genomovirus reconstructed fromthe plant metagenome
Chenchen Feng, Jiuhuan Feng, Ziyi Wang, Connor Pedersen, Xiuqing Wang, Huma Saleem, Leslie Domier, Shin-Yi
Lee Marzano
A novel alphaflexivirus confers declining virulence to Sclerotinia sclerotiorum with four +ssRNA virusesTing Ye, Zhongbo Lu, Jie Duan, Han Li, Yang Lin, Jiatao Xie, Jiasen Cheng, Bo Li, Tao Chen, Yanping Fu, Weidong
Chen, Daohong Jiang
VIRUS MOLECULAR BIOLOGY I
A new tetra-segmented splipalmivirus with divided RdRP domains from Cryphonectria naterciae, a fungus found on chestnut
and cork oak trees in Europe
Paul Telengech, Yukiyo Sato, Sabitree Shahi, Sakae Hisano, Carolina Cornejo, Daniel Rigling, Hideki Kondo,
Nobuhiro Suzuki
The unique molecular characteristics of Alternaria alternata virus 1 (AaV1): 5ʼ m7G-cap / 3ʼ Poly (A : U) structure, specific44defective dsRNA genomes
Chien-Fu Wu, Toshiyuki Fukuhara, Okada Ryo, Hiromitsu Moriyama
Isolation and characterization of mycovirus FiAV1
Dongwei Liu, Jiaqing song, Xin pan, Shuwei yan, Ke Li, Yuan Xie, Fei Gao, Junli Dai, Honglian Li, Xiaoting Zhang
Differential enzymes activity among virus-free and virus-infected Cryphonectria parasitica strains in solid state fermentation onwastesDaniela Bulgari, Salvatore Savino, Eugenio Monti, Emanuela Gobbi
VIRUS MOLECULAR BIOLOGY II
Partnership between capsidless (+)ssRNA yadokariviruses and their host dsRNA viruses: Promiscuous or virtuous?
Yukiyo Sato, Sakae Hisano, Carlos Lopez Hererra, Hideki Kondo, Nobuhiro Suzuki
Construction and characterization of an infectious clone of Botrytis virus F
Laura Córdoba, Ana Ruiz-Padilla, Julio Rodríguez-Romero, María A. Ayllón
The internal ribosome entry site of Cryphonectria hypovirus 1 contributes to the viral viability
Hironori Kubo, Ikuo Sato, Daigo Takemoto, Nobuhiro Suzuki, Sotaro Chiba
A bipartite hypovirus is the link to the emergence of the mega-hypoviruses carrying helicases from nidovirales
Marco Forgia, Addolorata Colariccio, Maria Aurea Saboya Chiaradia Picarelli, Eliana Borges Rivas, Massimo Turina
Molecular characterization of Ambiviruses is revealing a so far unreported replication/transcription mechanism
Stefania Daghino, Marco Forgia, Silvia Perotto, Massimo Turina
Ambiviruses code for active self-cleaving ribozymes likely involved in their replication through a rolling-circle mechanism
Beatriz Navarro, Marco Forgia, Andreas Gisel, Stefania Daghino, Massimo Turina, Francesco Di Serio
Properties of Fusarium graminearum virus China 9 (FgV-ch9)Cornelia Heinze
Molecular characterization of a novel hypovirus from a fungal host Fusarium incarnatum isolated from the banana stalk
Yiting Ye, Yijuan Wu, Hongxia Cheng, Yunfeng Li, Huaping Li, Pengfei Li
Site-specific cleavages occurred in both RNA genome of phytophthora endornavirus, and its full-length, plus-strand RNAtranscribed in yeast
Kohei Sakuta, Keiko Uchida, Toshiyuki Fukuhara, Ryo Okada, Hiromitsu Moriyama
MYCOVIRUS BIODIVERSITY II
Studies on virus diversity and effects in plant pathogens Phytophthora and Heterobasidion
Anna Poimala, Päivi Parikka, Milica Raco, Mohammad Kashif, Elina Roininen, Jarkko Hantula, Eeva J. Vainio
Diverse virome of a native population of a tree pathogen Phytophthora castaneae revealed by high-throughput sequencing of
total and small RNA
Milica Raco, Eeva J. Vainio, Suvi Sutela, Aleš Eichmeier, Eliška Hakalová, Thomas Jung, Leticia Botella
Characterization of novel mycoviruses of Botrytis cinerea infecting grapevine
Ana Ruiz-Padilla, Julio Rodríguez-Romero, Irene Gómez-Cid, Davide Pacifico and María A. Ayllón
Novel, diverse RNA viruses in the Japanese population of the ash dieback fungus, Hymenoscyphus fraxineus
Wajeeha Shamsi, Hideki Kondo, Daniel Rigling, Simone Prospero
Detection of multiple viral infections in Dothistroma septosporum, the causal agent of Dothistroma Needle Blight (DNB)
Miloš Trifković, Ondřej Hejna, Libor Jankovský, Leticia Botella
Viruses of fungi associated with boreal conifers
Eeva J. Vainio, Suvi Sutela, Tiia Drenkhan, Riikka Linnakoski, Jarkko Hantula, Mohammad Kashif, Anna Poimala,
Tuula Piri
Molecular detection and characterization of mycoviruses in the genus Armillaria in Central Europe
Lucie Walterová, Tomáš Tonka, Ondřej Hejna, Leticia Botella, Vladislav ČurnMycovirus diversity and new mycoviruses identification in phytopathogenic fungus Sclerotinia sclerotiorum
Jiatao Xie, Fan Mu, Jichun Jia, Daohong Jiang, Jiasen Cheng, Yanping Fu
Searching for the virome of two Fusarium collections using metagenomics
Jing Zhang, Francesco Cuppone, Riccardo Baroncelli, Antonio Prodi, Claudio Ratti
Metatranscriptomics reveals the mycoviral diversity of three major fungal pathogens on rice
Zhenrui He, Xiaotong Huang, Yu Fan, Erxun Zhou
MYCOVIRUS HOST INTERACTIONS I
The establishment of FgGMTV1-induced gene silencing system in Fusarium graminearum
Shaojian Ruan, Lihang Zhang, Shuangchao Wang, Lihua Guo45

A transfectable fusagravirus from Cryphonectria carpinicola with spherical particles
Sakae Hisano, Subha Das, Hideki Kondo, Nobuhiro Suzuki
A novel hypovirus identified from phytopathogenic fungus Valsa mali, with a deletion variant having enhanced replicative
potential and pathogenicity
Shian Yang, Ruoyin Dai, Ida Bagus Andika, Liying Sun
Comparing fungal response to mycovirus infection between some strain of Aspergillus flavus
Misa Kuroki, Syun-ichi Urayama, Takashi Yaguchi, Daisuke Hagiwara
MYCOVIRAL TAXA ADAPTING TO PLANTS AND INSECTS
Agrobacterium mediated production of viral particles of a Bethapartitivirus in N. benthamiana
Miotti Niccoloʼ, Nicola Zampolli, Mattia DallʼAra, David Baldo, Roberta Paris, Claudio Ratti, Paola Casati
Mitoviruses in Plants and Insects
Marina Ciuffo, Turina Massimo, Sara Ottati, Dario Di-Silvestre, Giulia Passignani, Rossana Rossi, Mauri Pierluigi,
Vigani Giampiero
MYCOVIRUS HOST INTERACTIONS II
Variable effect of Cryphonectria hypovirus 1 infection on laccase activity in chestnut blight fungus
Lucija Nuskern, Mirta Tkalec, Bruno Srezović, Marin Ježić, Martina Gačar, Mirna Ćurković Perica
Biological impact of multiple partitiviruses infections on Rhizoctonia oryzae-sativae
Sokty Neang, Hideki Kondo, Nobuhiro Suzuki, Ikuo Sato, Daigo Takemoto, Masao Arakawa, Sotaro Chiba
Argonaute-independent antiviral RNA interference in the chestnut blight fungus, Cryphonectria parasitica
Yukiyo Sato, Nobuhiro Suzuki
Low-level IRES activity likely contributes to the replication restriction of Cryphonectria hypovirus 1 in Cryphonectria carpinicola
Sabitree Shahi, Sotaro Chiba, Yoshihiro Takaki, Nobuhiro Suzuki
Research on the functions of mycoviruses in Trichoderma spp. from Inner Mongolia and Xinjiang, China
Beilei Wu, Chenchen Liu, Rongqun Wang, Zhaoyan Tan, Xiliang Jiang
Fusarium graminearum virus 1 ORF2 protein-mediated transcriptional repression of FgDICER-2 and FgAGO-1 genes inFusarium graminearum
Jisuk Yu, Gudam Kwon, Kook-Hyung Kim
Challenges to elucidating how mycoviruses influence fungal hosts: residual effects after the loss of a mitovirus
Cristina Zamora-Ballesteros, Brenda D. Wingfield, Michael J. Wingfield, Jorge Martín-García, Julio J. Diez
VIRUS ECOLOGICAL SIGNIFICANCE AND EVOLUTION
Synonymous codon usage bias in Cryphonectria parasitica viruses: Insights on evolution and host adaptation
Zeeshan Zahid, Alanna B. Cohen, Nobuhiro Suzuki, Bradley I. Hillman
Occurrences of natural cross-infection of plant viruses to fungi
Liu Jie, Cao Xinran, Sun Liying, Ida Bagus Andika
HiFi sequencing of Cryphonectria hypovirus 1 intra-host populations uncovers dynamic evolution of viral variants in naturalinfections
Marin Ježić, Deborah M. Leigh, Karla Peranić, Simone Prospero, Carolina Cornejo, Mirna Ćurković-Perica, Quirin
Kupper, Lucija Nuskern, Daniel Rigling
The virome of arbuscular mycorrhizal fungi
Luisa Lanfranco, Alessandro Silvestri, Massimo Turina
Dynamics of natural hypovirulence in the chestnut blight fungus in Europe
Daniel Rigling, Janine Melanie Schwarz, Marin Ježić, Kiril Sotirovski, Mihajlo Risteski, Mirna Ćurković-Perica,
Deborah Leigh, Simone Prospero
A Beneficial Mycovirus in an Animal Disease
Marilyn J Roossinck, Vaskar Thapa
Dynamics of mycoviruses in the lab and field conditions.
Syun-ichi Urayama, Yuto Chiba, Yanjie Zhao, Daisuke Hagiwara
The biogeography of mycoviruses infecting Leptosphaeria biglobosa in oilseed rape growing areas of China
Kang Zhou, Mingde Wu Jing Zhang, Long Yang, Guoqing Li
Fusarium graminearum virus 1 ORF2 protein-mediated transcriptional repression of FgDICER-2 and FgAGO-1 genes inFusarium graminearum
Jisuk Yu, Gudam Kwon, Kook-Hyung Kim

46

PAG ASIA 2022 Plant and Animal Genome Conference (June 22-24, 2022)
Workshop: Advances in Barley Genomics and Genetics
June 23, 2022
Venue: Online
Organizers: Ramamurthy Mahalingam (USDA-ARS), Hiroshi Hisano (IPSR, Okayama University)
1. Six-rowed wild-growing barleys are hybrids of diverse origins
Yu Guo (Leibniz Institute, Germany)
2. Enhanced tolerance to pre-harvest sprouting by targeted mutagenesis of grain dormancy genes in barley
Hiroshi Hisano (IPSR, Okayama University, Japan)
3. Establishment of a genotype-flexible, meristem-based transformation system for barley targeting storable explants
Heidi F. Kaeppler (University of Wisconsin, USA)
4. Feeding the world safely: Proteomics for enhanced barley lines
Michelle L. Colgrave (CSIRO, Australia)
5. Transcriptome analysis of barley lines with contrasting responses to abiotic stresses
Ramamurthy Mahalingam (USDA-ARS, USA)

高校生向け Summer Science School 2022
日程：2022 年 8 月 1 日
場所：岡山大学資源植物科学研究所
１．遺伝子の変異を検出してみよう
松島 良（岡山大学・植物研）
２．植物の栄養の摂り方
山地直樹・三谷奈見季（岡山大学・植物研）
３．遺伝子を切り貼り，操作しよう！
佐々木孝行（岡山大学・植物研）
４．葉と根の違いは？～遺伝子発現から考える～
力石和英（岡山大学・植物研）
５．植物ホルモンを測る
松浦恭和・森 泉（岡山大学・植物研）
６．ここまで見える！植物の細胞分裂
長岐清孝（岡山大学・植物研）
７．“麦”って何？～コムギ vs. オオムギ 徹底比較～
最相大輔・久野 裕（岡山大学・植物研）
８．ウイルスだって役に立つ！
近藤秀樹・兵頭 究（岡山大学・植物研）

47

Plant Microbiota Research Network (PMRN) 第 2 回オンラインシンポジウム
日程：2022 年 8 月 22 日
場所：オンライン
オーガナイザー：大津美奈（奈良先端大学）・岡野夕香里（福島大学）・川原田泰之（岩手大学）
亀岡 啓（東北大学）・杉山暁史（京都大学）・深田史美（岡山大学・植物研）
中野亮平トーマス（マックスプランク植物育種学研究所）
招待講演
１．見過ごされてきた訪花者：花をめぐる細菌とその役割
酒井章子（京都大学）
２．統合ネットワーク解析から探る植物−土壌微生物共生系の養分適応戦略
菅井徹人（森林総研）
３．菌集合体を活用した生物防除の実現に向けた取り組み
田中江梨子（ヤンマーホールディングス株式会社）
４．他者との関わり方を変える植物病原真菌の CD 染色体
鮎川 侑（マックスプランク植物育種学研究所，理化学研究所）
ポスター発表 22 演題
https://rtnakanolab.com/pmrn/pmrn2022/

IPSR International Web Forum on Plant Stress Scienceby Early-Career Scientists 2022
September 14, 2022
Venue: IPSR, Okayama University, Japan (Online)
Organizers: Yoji Kawano, Nobuhiro Suzuki (IPSR, Okayama University)
Opening Remarks
Takashi Hirayama (IPSR, Okayama University, Japan)[1] Biotic Stress
1. Examination of viruses in mushroom pathogenic fungi
Lorant Hatvani (Teagasc, Ireland)
2. Role of a siderophore in Methylobacterium aquaticum strain 22A
Juma Patrick (IPSR, Okayama University, Japan)
3. Feeding behavior of golden apple snail on rice and subsequent rice defense responses
Mafrikhul Muttaqin (Nara Institute of Science and Technology, Japan)
4. An m6A reader limits salicylic acid-mediated plant stress responses
Kaiwei Liu (CAS center for Excellence in Molecular Plant Sciences, China)
5. Roles of DEMETER in regulating DNA methylation in vegetative tissues and pathogen resistance
Yongping Ke (CAS Center for Excellence in Molecular Plant Sciences, China)
6. Elicitation and supression of plant immunity by R. solanacearum effectors
Wenjia Yu (CAS Center for Excellence in Molecular Plant Sciences, China)
7. Leucine-rich repeats and nucleotide-binding domain determine sensor-helper specificity in the NRC network
Ching-Yi Huang (Institute of Plant and Microbial Biology, Taiwan)
8. Exploring how Ustilago maydis glycosylated effector negates the plant counter-attack at the apoplast
Chibbhi Bhaskar (Institute of Plant and Microbial Biology, Taiwan)

48[2] Abiotic Stress
1. Lipid peroxide-derived reactive carbonyl species are the regulator of plant growth and stress responses
Md Sanaullah Biswas (Yamaguchi University, Japan)
2. Diversification of heat shock transcription factors expanded thermal stress responses during early plant evolution
Ting-Ying Wu (Temasek Life Science, Singapore)
3. CAMTA12 in soybean is an efficient transcription factor positively regulating drought stress
Muhammad Noman (UFLA, Brazil)
4. Knockout of OsPIP2;4, a rice aquaporin, changes root water permeability but not overexpression
Aya Onishi (IPSR, Okayama University, Japan)
5. Na+ and K+ transport mechanism of ion channel aquaporins
Shuntaro Ono (IPSR, Okayama University, Japan)
6. HOMEODOMAIN-containing protein mediates chromatin organization and modulates leaf epidermal patterning
Ansar Ali (Institute of Plant and Microbial Biology, Taiwan)
7. Developing cold tolerant plant through modulating actin isovariant ACT8-mediated cellular auxin homeostasis
Aya Hanzawa (Iwate University, Japan)
Open Discussion: How to enjoy academic life for early career scientists
Roberto Solano (National Centre for Biotechnology, Spain)
Wataru Sakamoto (IPSR, Okayama University, Japan)
Lay-Sun Ma (Institute of Plant and Microbial Biology, Taiwan)
Alberto Macho (CAS Center for Excellence in Molecular Plant Sciences, China)
Muhammad Noman (UFLA, Brazil)
Ting-Ying Wu (Temasek Life Science, Singapore)
Ansar Ali (Institude of Plant and Microbial Biology, Taiwan)
Mafrikhul Muttaqin (Nara Institute of Science and Technology, Japan)
Kaiwei Liu (CAS Center for Excellence in Molecular Plant Sciences, China)

日本育種学会第 142 回講演会 ワークショップ
麦学オンサイトセミナー：研究成果をどう育種に活かすのか？
日程：2022 年 9 月 23 日
場所：帯広畜産大学
オーガナイザー：佐久間 俊（鳥取大学農学部）・久野 裕（岡山大学・植物研）
はじめに

佐久間 俊（鳥取大学）

１．穀類における子実登熟環境と次世代成長
石橋勇志・濱岡範光・スリヤサック チェットピリン（九州大学）
２．異種染色体による染色体切断と，切断を抑制するパンコムギゲノム上の因子について
村田和樹・那須田周平（京都大学）
３．実用育種と基礎・応用研究の密な関係
大西志全（北海道立総合研究機構）
４．先端研究と育種現場のギャップ：CIMMYT 内で話された事岸井正浩（国際農林水産業研究センター）
５．ムギ類における出穂期不安定性の遺伝研究と育種
加藤鎌司（岡山大学）
総合討論

久野 裕（岡山大学・植物研）

49

第 42 回日本植物病理学会関西部会若手の会
日程：2022 年 9 月 30 日
場所：オンライン
オーガナイザー：安達広明（京都大学）・大津美奈（奈良先端大学）
大崎久美子（鳥取大学）・佐藤育夫（名古屋大学）・兵頭 究（岡山大学・植物研）
深田史美（岡山大学・植物研）・松井英譲（岡山大学）・峯 彰（京都大学）・山口公志（近畿大学）
講演会
１．遺伝子発現プロファイルから見た青枯病菌の植物感染機構
都筑正行（高知大学）
２．植物が病原菌特有の脂質を感知するしくみの研究
加藤大明（京都大学）
３．イネと白葉枯病菌が繰り広げる遺伝的攻防
吉久采花（近畿大学）
４．ナス科植物の病害抵抗性における分泌型ペプチドの機能
今野沙弥香（名古屋大学）
５．農業試験場に求められる研究～高知県を例に～
林 一沙（高知県農業技術センター）
６．農機メーカーが有用菌を用いて生物防除へ取り組む意味とは
藤原正幸・梅木大輔（ヤンマーホールディングス株式会社）

令和 4 年度岡山大学資源植物科学研究所公開講座プログラム（倉敷市大学連携講座）
日程：2022 年 10 月 1 日
場所：岡山大学資源植物科学研究所
１．植物の病気を防ぐしくみ河野洋治（岡山大学・植物研）
２．顕微鏡でのぞくデンプンの世界
松島 良（岡山大学・植物研）

第 10 回糸状菌分子生物学研究会若手の会ワークショップ
日程：2022 年 11 月 23 日
場所：オンライン
オーガナイザー：荒木康子（キッコーマン株式会社）・國武絵美（三重大学）田中瑞己（東京農工大学）
戸所健彦（月桂冠株式会社）・深田史美（岡山大学・植物研）・守田湧貴（九州大学）
招待講演
１．ゲノムから見る麹菌の家畜化進化
酒井香奈江（大阪大学）
２．植物病原糸状菌研究の壁 ～炭疽病菌の事例～
熊倉直祐（理化学研究所）
３．麹菌におけるゲノム編集技術の確立と応用
片山琢也（東京大学）
４．カビ・キノコとともに 40 年～この先は？
髙木 忍（農水省）
グループワーク「10 年後の夢の糸状菌を考える」

50

岡山大学資源植物科学研究所 令和 4 年度共同研究拠点オンラインワークショップ「イネ科作物の穂先突起の形態を制御する遺伝子」
日程：2022 年 12 月 21 日
場所：オンライン
オーガナイザー：武田 真（岡山大学・植物研）
はじめに

武田 真（岡山大学・植物研）

１．オオムギ・コムギの芒の長さを決める遺伝子
武田 真（岡山大学・植物研）
招待講演
２．ソルガムの芒伸長を顕性で抑制する DAI 遺伝子の同定とこの先の展望
高梨秀樹（東京大学）
３．イネにおける芒の形作りのしくみ
鳥羽大陽（宮城大学）
４．アワ・エノコログサの刺毛（しもう）に関わる遺伝子
福永健二（県立広島大学）
総合討論

51

学会賞等 (Awards)
統合ゲノム育種グループ，古田智敬（助教），優秀発表賞，他殖性作物の多系交雑集団にも対応した遺伝子型データエラー
修正ツール「GBScleanR」の開発，日本育種学会 141 回講演会，3 月 21 日，2022．
植物ストレス学グループ，馬 建鋒（教授），第 63 回日本植物生理学会賞，作物のミネラル輸送機構に関する研究，3 月 23 日，
2022．
植物ストレス学グループ，Che, J., Yamaji, N., Miyaji, T., Mitani-Ueno, N., Kato, Y., Shen, R. F., Ma, J. F.（教授），第 63 回日本
植物生理学会 PCP Best Paper Award, Node-Localized Transporters of Phosphorus Essential for Seed Development
in Rice, 3 月 23 日，2022．
ゲノム多様性グループ，佐藤和広（教授），2022 年度日本農学賞・読売農学賞，日本農学会・読売新聞社「オオムギゲノム
多様性の解析と分子育種への応用」，4 月 5 日，2022．
植物ストレス学グループ，黄 勝（特別契約職員助教），日本土壌肥料学会 2022 年度東京大会若手口頭発表優秀賞，OsZIP2
mediates xylem loading and preferential distribution of Zn in rice, 9 月 15 日，2022．
環境機能分子開発グループ，近藤雄基（博士前期課程 2 年），日本宇宙生物科学会第 36 回大会発表奨励賞，「酸化ヌクレオ
チド消去に関与するイネ Nudix hydrolase の探索」，9 月 17 日，2022．
植物・微生物相互作用グループ，Muhammad Fadli (Doctor course Student), Best Presentation Award, Identification of the
new yadonusi and yadokari interplay from Aspergillus foetidus Japanese strain NBRC 4031, The 36th Annual Meetingof the Chugoku/Shikoku Regional Virology Society, Oct. 29-30, 2022.
植物ストレス学グループ，馬 建鋒（教授），紫綬褒章，11 月 2 日，2022．
植物ストレス学グループ，馬 建鋒（教授），Highly Cited Researchers，高被引用論文著者リスト 2022 年版，Clarivate 社（旧トムソン・ロイター IP ＆ Science），11 月 15 日，2022．
植物ストレス学グループ，山地直樹（准教授），
Highly Cited Researchers，高被引用論文著者リスト 2022 年版，Clarivate 社（旧トムソン・ロイター IP ＆ Science），11 月 15 日，2022．
統合ゲノム育種グループ，岡 大晴（博士前期課程 1 年），第 14 回中国地域育種談話会優秀発表賞，「アジアイネとアフリカ
イネの稔実 4 倍体雑種を用いた農業形質に関する遺伝解析法の検討」，12 月 11 日，2022.

52

共同研究リスト（共同利用・共同研究拠点事業）(List of Joint Projects at the Joint Usage/ Research Center)
重点研究所属機関・部局

職

名

氏

名

課題名

課題名（英語名）

受入教員名
古田

農業・食品産業技術総合研究機
構・生物機能利用研究部門

研究員

黒羽 剛

アフリカイネおよび野生イネの花形態における遺伝的多様性の解析

Genetic diversity analysis of floral traits in Africanand wild rice

鳥取大学・農学部

助教

佐久間 俊

オオムギのゲノム編集技術の高度化

Upgrading barley genome editing technology

職

氏

久野・松島

若手奨励研究所属機関・部局名

名

課題名

課題名（英語名）

受入教員名

53

九州大学・大学院農学研究院

准教授

後藤 栄治

光合成依存の葉緑体運動の分子機構解明

Study on molecular mechanisms of photosynthesisinduced chloroplast movements

桶川立命館大学・立命館グローバル・
イノベーション研究機構

助教

田原 緑

トウガラシに潜伏する新規ナルナ様ウイル
スの性状解析

The characterization of a novel narna-like virus in
pepper鈴木

北海道大学・大学院農学研究院

助教

丸山 隼人

土壌難利用性リン獲得およびアルミニウム
集積に関わる有機酸輸送体の機能解析

Functional analysis of organic acid transporters
involved in soil-insoluble phosphorus acquisition
and aluminum accumulation

佐々木

職

氏

課題名

課題名（英語名）

受入教員名

一般研究
所属機関・部局名

名

名古屋大学・大学院理学研究科

准教授

吉岡 泰

葉緑体 BamA, BamB 相同タンパク質の機能解明

Functional analysis of chloroplast BamA and
BamB homologous proteins坂本

明治大学・農学部

教授

吉本 光希

外部栄養環境に応答する葉緑体分解機構の解析

Analysis of the mechanism of plastid degradation
responding to external nutrients

坂本

甲南大学・理工学部

准教授

上田 晴子

モデル植物から採取した溢泌液の成分解析

Compositional analysis of guttation dropletscollected from model plants

坂本

所属機関・部局

職

名

氏

名

課題名

課題名（英語名）

受入教員名

東京農業大学・応用生物科学部

教授

阿久澤 さゆりカタクリ（Erythronium japonicum DENCE.） Fine str ucture and rheological proper ties of
鱗茎から分離した澱粉の微細構造および糊 separated starch from Katakuri (Er ythronium
液の物性解析
japonicum DENCE) bulbs

松島

東京大学・大学院新領域創成科
学研究科

准教授

大谷 美沙都鉄を介したオルガネラ間情報伝達が側根形態形成に果たす役割の解明

Elucidation of roles for iron-mediated organelle
signal transduction in lateral root formation

平山立命館大学・生命科学部教授

深尾 陽一朗シロイヌナズナの根において亜鉛欠乏時に発現量が上昇する DEFL ペプチドの解析

Analysis of Zn deficiency inducible DEFL peptides
in Arabidopsis roots

森

Roles of salicylic acid biosynthetic and regulatory
pathways in chlorosis development in inducible
chlorosis model tobacco and Nʼ tobamovir us
resistance森54

愛媛大学・大学院農学研究科

教授

小林 括平

誘導型退緑モデルタバコにおける退緑発症と Nʼ トバモウイルス抵抗性におけるサリチル酸合成制御系の役割

国立環境研究所・福島地域協働
研究拠点

室長

玉置 雅紀

低線量放射線による花成促進における植物
ホルモンの関与

Role of phytohormones on early flowering induced
by low level of radiation

森

北海道大学・大学院理学研究院

准教授

伊藤 秀臣

ヒストン脱アセチル化酵素による新規トラ
ンスポゾン抑制機構の解明

Analysis of a Novel Transposon Suppression
Mechanism by Histone Deacetylases

池田陽

京都大学・大学院理学研究科

助教

槻木 竜二

植物幹細胞の分化制御に関わる遺伝子の解析Studies on genes involved in stem-celldifferentiation in Arabidopsis

池田陽

愛媛大学・大学院農学研究科

准教授

賀屋 秀隆

植物における DNA メチル化編集技術開発

Development of Epigenome Editing Technology in池田陽・長岐Plants

吉備国際大学・農学部地域創成
農学科

准教授

氷見 英子

コムギ新規休眠関連遺伝子の解析

Analysis of novel dormancy-related genes on
wheat

力石

広島大学・大学院統合生命科学
研究科

教授

鈴木 克周

小麦内生菌アグロバクテリアで見つかった
Ri プラスミドの構造決定と活用

Str uctural characterization of the hair y-rootdisease inducing (Ri) plasmid of wheat endophyte
bacteria

力石

名古屋大学・大学院理学研究科

講師

井上 晋一郎シロイヌナズナの Mg ホメオスタシス維持機構の解明と Mg ストレス耐性植物の開発

Elucidation of the maintenance mechanism of
Arabidopsis Mg homeostasis and development of
Mg stress-tolerant plants

馬名古屋大学・大学院生命農学研
究科

准教授

白武 勝裕

接ぎ木接着におけるマンガンとマンガン輸
送体の役割

The role of manganese and manganese transporterin grafting馬所属機関・部局

職

名

氏

名

課題名

課題名（英語名）

受入教員名

教授

野村 美加

ミヤコグサ根粒形成に関与する遺伝子群の局在解析

Cellular localization of the nodulation genes in
Lotus japonicus

馬・山地

筑波大学・生命環境系

准教授

古川 純

モデル樹木ポプラにおけるカリウム輸送体の局在解析

Localization analysis of potassium transporters inmodel tree poplar

山地・馬名古屋大学・アイソトープ総合
センター

講師

杉田 亮平

シロイヌナズナの根における Na+ 排出メカ
ニズムの解析

The mechanism of sodium efflux in Arabidopsis
root

山地

九州大学・大学院農学研究院

准教授

丸山 明子

硫黄不足に応じた地上部リン酸量増加の分子機構と生理的意義

Molecular mechanism and physiological role ofthe increased phosphate accumulation in plantshoots responding to sulfur deficiency

三谷・山地

信州大学・繊維学部

教授

堀江 智明

イネの Na+ 透過性チャンネルの輸送特性と活性制御機構の解明

Elucidation of transport property and regulatory
mechanism of transport activity of Na+ permeablechannels in rice

且原

森林研究・整備機構・森林総合研究所森林バイオ研究センター

特別研究員

佐藤 良介

サボテンの全アクアポリンにおける水輸送
活性の解析

Analysis of water permeability of all aquaporins incactus且原

奈良先端科学技術大学院大学・
先端科学技術研究科

助教

安田 盛貴

植物免疫における細胞膜アクアポリンのリン酸化活性調節機構の解析

Functional analysis of Arabidopsis plasma
membrane aquaporin phosphor ylation in plant
immunity

且原

岡山大学・学術研究院環境生命
科学学域

准教授

宗正 晋太郎イオンチャネルを利用した環境ストレス耐性作物作出技術の開発

Using ion channels to engineer crop stressresistance佐々木・森

農業・食品産業技術総合研究機
構・作物研究部門

主席研究員

中村 信吾

種子休眠制御に関わる MFT 遺伝子の機能
解析

Functional analysis of MFT gene involved in seed
dormancy regulation

宇都木

福井大学・学術研究院医学系部
門

助教

本田 信治

モデル生物アカパンカビを用いた植物病原
糸状菌とウイルスの相互作用の包括的解析

Comprehensive analysis of interactions between
fungal plant pathogens and vir uses using themodel organism Neurospora crass

鈴木名古屋大学・大学院生命農学研
究科准教授

千葉 壮太郎RNA ウイルス因子を利用した植物病原糸状菌における多重遺伝子発現系の構築

Development of a multiple gene expression systemusing RNA viral elements in phytopathogenic
filamentous fungi

鈴木東京家政大学・家政学部

教授

藤森 文啓

食品利用の有用菌類に見出されたマイコウ
イルスの分子生物学的解析

Molecular characterization of mycovir uses
infecting the useful food fungi

近藤

55

香川大学・農学部

所属機関・部局

職

名

氏

名

課題名

課題名（英語名）

受入教員名
ガリス

56

山形大学・農学部

准教授

網干 貴子

イネにおけるイソペンチルアミン生合成遺伝子の解明

Investigation of the gene to produce
isopentylamine in rice

東京理科大学・先進工学部

助教

出崎 能丈

植物の害虫抵抗性シグナル伝達機構の解析

Characterization of herbivore-derived elicitor
新屋・ガリス
signaling system

九州工業大学・生命化学情報工
学研究系

教授

花田 耕介

イネで新奇に同定した短い遺伝子の抗病原性効果の検証Anti-biotic effects of newly identified small genes
in Oryza sativa

河野

愛媛県農林水産研究所・果樹研
究センター

研究員

小佐見 謙一ウンシュウミカンの浮き皮に関わる原因遺伝子の探索

Search for genes to be related to peel puffing in
Satsuma mandarin fruit

河野東京大学・農学生命科学研究科

教授

青木 直大

稲体内の糖代謝の遺伝的改変が根圏のイオン組成および微生物叢に及ぼす影響

Ef fects of genetic modification of sugar
metabolism within rice plants on ion composition
and microbiome in the rhizosphere谷

京都大学・大学院農学研究科

准教授

由里本 博也

環境保全型農業での活用を目指した C1 細菌 − 植物共生系の共生原理解明

Elucidation of principles of C1-microbe-plantinteractions applicable for envir onmental
conservation agriculture

谷

理化学研究所・バイオリソース
研究センター

専任研究員

安部 洋

モデル植物を用いたメチロバクテリウムと植物の相互作用についての研究

Study on interaction of Methylobacterium andplants using a model plant, Arabidopsis

谷

岡山大学・学術研究院医歯薬学域（薬学系）

教授

久保田 高明微細藻類と共生細菌の相互作用機構の解明

Understanding the mechanisms of symbiotic
interactions between microalgae and bacteria

植木

広島大学・大学院統合生命科学
研究科

教授

小池 一彦

栄養塩欠乏条件下における微細藻類の強光防御機構

Photoprotection in microalgae under nutrient
depletions

植木神戸大学・大学院農学研究科

教授

土佐 幸雄

オオムギのいもち病抵抗性遺伝子座 Rmo2の進化過程の解析

Analyses of evolutionar y processes of theRmo2 locus conditioning resistance of barley to
Pyricularia oryzae

佐藤・久野

長崎大学・情報データ科学部

教授

持田 恵一

一細胞解像度での日本の圃場メタゲノムユ
ニバースの描出The atlas of single-cell level “metagenome
universe” of crop fields in Japan

最相・谷

愛媛大学・大学院農学研究科

准教授

八丈野 孝

病原及び共生糸状菌との相互作用研究に向けた侵入部位集積宿主因子の機能解明

Elucidation of the functions of host factors
accumulating at a penetration site for the study ofinteractions with pathogenic and symbiotic fungi

久野・松島所属機関・部局

職

名

氏

名

課題名

課題名（英語名）

受入教員名

准教授

藤井 紀行

高山植物ハクサンイチゲを用いた分子系統
地理学的研究～日本産高山植物の北方起源を再検証する～

Molecular phylogeographic study using alpine
plant Anemone narcissiflora -Reexamination of thenorthern origin of Japanese alpine flora-池田啓京都大学・大学院地球環境学堂教授

瀬戸口 浩彰

塩性湿地に生育するヨモギ属フクド（キク科）の耐塩性特性

Salinity tolerance of salt marsh mugwort Artemisia
fukudo (Asteraceae)

池田啓

三重大学・大学院生物資源学研
究科

准教授

水野 隆文

植物標本と蛍光 X 線分析計を用いた野生植
物の元素集積データベースの構築

Construction of an element accumulation databasefor wild plants using herbarium and X-ray
fluorescence analyzer

山下

鳥取大学・農学部教授

石原 亨

イネ科植物におけるストレス応答性二次代
謝の進化

Evolution of str ess r esponsive secondar ymentalism in Poaceae

武田

東京大学・大学院農学生命科学
研究科

准教授

伊藤 純一

オオムギおよびイネの形態形成過程における比較分子遺伝学的解析

Comparative molecular genetics of morphogenetic
pathways between barley and rice武田名古屋大学・生物機能開発利用
研究センター

助教

永井 啓祐

アフリカ栽培イネ Oryza glaberrima の洪水耐性機構の解明

Elucidation of flood tolerance mechanism ofAfrican rice Oryza glaberrima

山本・古田

北海道大学・大学院農学研究院

教授

貴島 祐治

イネの四倍体における遺伝的問題点の解決と育種利用に関する研究

The studies on the rice tetraploidy in the genetic
issues and breeding utilities

山本・長岐・
古田

鳴坂 義弘

月桃の遺伝学的解析

Genetic analysis of Alpinia zerumbet57

熊本大学・大学院先端科学研究部

岡山県農林水産総合センター・専門研究員
生物科学研究所

長岐

国際共同研究 (International programs)
所属機関・部局

職

名

氏

名

課題名

課題名（英語名）

受入教員名

Hawassa University,
School of Plant and Horticulture
Science, Ethiopia

Associate
Professor

Hewan
Demissie
Degu

エチオピアにおけるストレス耐性オオムギの開発

Development of stress tolerant barley germplasm inEthiopia

佐藤University of the Philippines,
Los Baños, Philippine

Mastercoursestudent

Michael Louie
Ramirez
URZO

イネ病原性菌類に感染するウイルスの分子生物学的性格付け

Molecular characterization of fungal viruses infecting
fungi pathogenic to rice鈴木

所属機関・部局

職

名

氏

名

課題名

課題名（英語名）

受入教員名

Instituto de Investigaciones en
Ingeniería Genética y Biología
Molecular, Argentine

Postdoctoral
fellow

Cecilia
Eugenia María
Grossi

作物管理の改良に有用な植物生育促進細菌である新規 Methylobacterium 属細菌の特性

Characterization of a novel Methylobacterium
isolate which is a plant gr owth-pr omoting
rhizobacteria that emerges as a potential strategy
to improve crop management

谷

Swedish University ofAgricultural Science, Sweden

Professor
emeritusand senioradvisorRoland vonBothmer

植物遺伝資源、育種および遺伝子組換え作物に関する調査と著作

Research and writing on plant genetic resources,
breeding and genetically modified crops佐藤58

拠点事業以外の共同研究（国内）(List of Collaborations besides the Joint Projects at the Joint Usage/Research Center (Domestic))
所属機関・部局

共同研究者名・職名

共同研究課題名

概要

受入研究者名59

岡山大学・
異分野基礎科学研究所

高橋 裕一郎・特任教授

チラコイド膜リン酸化タンパク質の解析

シロイヌナズナ・クラミドモナス等のチラコイド膜
タンパク質リン酸化を質量分析により解析する

坂本 亘

東京大学・先端科学技
術研究センター

石北 央・教授，
斎藤 圭亮・助教

D1 タンパク質酸化修飾のモデル構造解析

光阻害における D1 の酸化修飾による光化学系 II の安定性を構造モデルにより検討する

坂本 亘

東京大学・
農学生命科学研究科

堤 伸浩・教授

ソルガム有用形質 QTL の解析

たかきび由来 RIL を用いた有用形質 QTL の検出とゲノム解析による遺伝子同定

坂本 亘

広島大学・理学研究科

草場 信・教授

イネ DPD1 変異体の解析

CRISPR-CAS9 を 用 い た イ ネ へ の 変 異 導 入 法 に よ る
DPD1 ヌクレアーゼ欠失変異体の作出と解析

坂本 亘

東京大学・
農学生命科学研究科

藤原 徹・教授

ソルガムの木質化とバイオコールの開発利用

ソルガムのネットワーク解析による木質化とペレット作成に関する共同研究坂本 亘

秋田県立大学大学院・
藤田 直子・教授
生物資源科学研究科

澱粉粒の形状に異常を示す突然変異体の解析双方が独自に単離したデンプン粒の形状に異常を示
すイネの突然変異体の解析を行っている。澱粉物性の測定ならびに顕微鏡観察を分担して行っている

松島 良

農研機構・次世代作物開発研究センター

西村 宣之・
主任研究員

発芽制御機能の解明

発芽制御に関わる制御機構の解明を目指す研究

平山 隆志

理化学研究所・環境資源科学研究センター

持田 恵一・
チームリーダー

データ科学に基づく作物設計基盤技術の構築圃場オオムギの生長動態モデル構築

平山 隆志

理化学研究所・環境資源科学研究センター

持田 恵一・
チームリーダー

植物短鎖機能性ペプチド遺伝子の探索・解析基盤の開発機械学習モデル構築

平山 隆志

横浜市立大学・
植物遺伝資源部門

辻 寛之・准教授

データ科学に基づく作物設計基盤技術の構築圃場オオムギの生長動態解析

平山 隆志

名古屋工業大学・情報工学教育類メディ
ア情報分野

梅崎 太造・教授

データ科学に基づく作物設計基盤技術の構
築

圃場植物の画像解析手法の開発

平山 隆志

岡山大学・
自然科学研究科

林 靖彦・教授

CNT 生体ナノセンサーの開発

CNT を用いた生体物質認識ナノセンサーを開発

平山 隆志

所属機関・部局60

共同研究者名・職名

共同研究課題名

概要

受入研究者名高知大学，
株式会社林原

西村 安代・准教授，
その他

ナス科作物へのトレハロースの影響に関する研究

トレハロースによるナス科の短花柱花の割合の抑制の機構を解明する

平山 隆志・森 泉

岡山大学・
大学院自然科学研究科

村田 芳行・教授，
宗正 晋太郎・助教

気孔の環境応答に関する研究

サリチル酸，イソチオシアネート，光，アブシシン酸，
ジャスモン酸による気孔閉口に関与する信号伝達機
構を解明する森泉

岡山大学・大学院環境
生命科学研究科平井 儀彦・准教授，
村田 芳行・教授

イネのカドミウム吸収に関する研究

イネのアポプラスチックバイパスフローによるカドミウムの導管負荷現象を解析する

森泉

基礎生物学研究所・
進化多様性生物学領域

星野 敦・助教

作物におけるエピゲノム編集技術の開発

作物においてゲノム編集法に基づく DNA メチル化の書換え技術を開発する

池田 陽子

長岡技術科学大学大学
院・工学（系）研究科

西村 泰介・准教授

作物におけるエピゲノム編集技術の開発

作物においてゲノム編集法に基づく DNA メチル化の書換え技術を開発する

池田 陽子

岡山大学・
大学院自然科学研究科

赤木 剛士・研究教授

カキにおけるエピゲノムを介した雌雄の制
御カキにおけるエピゲノム制御を介した花の性の制御について解析する

池田 陽子

東京薬科大学・生命科学部

横堀 伸一・准教授

地球生物の宇宙生存可能性検証のための短期宇宙曝露実証実験システムの構築

短期宇宙曝露実証実験システムの構築と「非」極限環境生物の宇宙曝露における生存に関する解析

杉本 学

広島大学・
統合生命科学研究科

鈴木 克周・教授

ムギ類由来のアグロバクテリア内生菌による穀類植物の形質転換

アグロバクテリア内生菌を利用した穀類植物の形質転換効率の向上を目指す

力石 和英

神戸大学・
農学生命科学研究科

石川 亮・准教授

イネ亜鉛集積機構の解明

イネ種子中の亜鉛の測定

馬 建鋒

神戸大学

三村 徹郎・名誉教授

植物のリン酸輸体の研究

シャジクモ節間細胞から単離した細胞膜リン酸輸送
体の共役輸送イオンの同定

且原 真木

山形大学・農学部

我妻 忠雄・客員教授

H2O2 高分泌植物種の網羅的探索、細胞壁
高 H2O2 機構の解析

H2O2 高分泌機構におけるアクアポリンの役割の解明

且原 真木

広島大学・大学院総合生命科学研究科

和崎 淳・教授

持続的作物生産に向けたクラスター根の形
成能とリン供給能の活用

クラスター根形成作物の有機酸輸送体特性の解析

佐々木 孝行

岐阜大学・科学研究基盤センター

須賀 晴久・准教授

エチオピア産 Fusarium 属菌の解析

エチオピア産 Fusarium spp. に感染しているウイルスの宿主菌への影響の解明

鈴木 信弘

所属機関・部局

共同研究者名・職名

共同研究課題名

概要

受入研究者名61

岩手大学・農学部

八重樫 元・准教授

白紋羽病菌の RNA サイレンシング

パルティティウイルスに対する RNA サイレンシング
機構の解明

鈴木 信弘

NARO 植物防疫研究部
門・果樹茶病害虫防除研究領域

兼松 聡子・領域長白紋羽病菌のウイルスの探索

日本産白紋羽病菌のウイルスの性格付け

鈴木 信弘

大塚製薬・
創薬基盤研究所

宮崎 直幸・研究員

メガビルナウイルスの構造解析

メガビルナウイルスのクライオ電子顕微鏡観察によ
る構造解析

鈴木 信弘

名古屋大学・
大学院生命農学研究科

千葉 壮太郎 ･ 准教授

BNYVV の病原学的研究

テンサイ叢根病の原因ウイルス BNYVV が保持するサ
テライト様ゲノム RNA 分節の解析

近藤 秀樹

長野県農業試験場

前島 秀和・
主任研究員

ムギ類に発生するウイルスの解析

コムギモザイクウイルスのオオムギでの初発生の確認とその性状解析

近藤 秀樹

埼玉大学・
理工学研究科

小竹 敬久・教授

植食性昆虫認識に関わる細胞壁由来エリシ
ターの解析

クサシロキヨトウ食害認識に関わるイネ細胞壁由来
エリシターを解析する

Galis Ivan・新屋 友規

東京大学・アグロバイ
オテクノロジー研究センター

岡田 憲典・准教授

イネファイトアレキシンの機能解析

イネにおけるファイトアレキシンの耐虫性に関する
機能解析

Galis Ivan・新屋 友規

信州大学・繊維学部

秋山 佳丈・教授

植食性昆虫の蛹室作りの解析

植食性昆虫の植物素材接着剤を使った蛹室作りの解析と 3 次元造形への応用

新屋 友規・Galis Ivan

大阪公立大学・
大学院理学研究科

森 英樹・准教授

植食性昆虫の蛹室作りの解析

植食性昆虫の植物素材接着剤を使った蛹室作りの解析と 3 次元造形への応用

新屋 友規・Galis Ivan

京都大学・農学研究科

寺内 良平・教授

いもち病菌エフェクター Avr-Pit の同定

バイオインフォマティクス技術を用いた、いもち病
菌エフェクター Avr-Pit の同定

河野 洋治

近畿大学・農学部

川﨑 努・教授

植物免疫に関わるホルモン様ペプチドの解析

植物免疫に関わるホルモン様ペプチドのシグナル伝
達の解析

河野 洋治

京都大学・農学部

吉田 健太郎・教授

NLR タンパク質の進化解析

バイオインフォマティクス技術を用いた、NLR の進
化解析

河野 洋治

立命館大学・
生命科学部

深尾 陽一朗・教授

イネ免疫のシグナル伝達に関与する分子の同定

イネ免疫のシグナル伝達に関与する分子のプロテオ
ミクス解析

河野 洋治

62

所属機関・部局

共同研究者名・職名

共同研究課題名愛媛県農林水産研究所・果樹研究センター

小佐見 謙一・研究員

解糖系酵素 GAPC1 を介したヒストンアセ
チル化の制御機構

イネ免疫に関わる分子の立体構造解析

河野 洋治

岡山理科大学・理学部

三井 亮司・教授

メチロトロフ細菌のランタノイド依存性メ
タノール代謝モデル細菌を用いたメタノール資化経路に関わる酵素のランタノイド依存性に関する研究

谷 明生

広島大学・
統合生命科学研究科

加藤 純一・教授

メタノール資化性細菌におけるメタノール
への走化性の分子機構解析

Methylobacterium 属細菌におけるメタノール走化性の分子メカニズムの解明

谷 明生

京都大学・
大学院応用生命科学

由里本 博也・准教授

メチロトロフ細菌におけるシデロフォア

Methylobacterium 属細菌における鉄吸収に関わるシデロフォアの分子解析

谷 明生

京都大学・理学部

小山 時隆・教授

メチロトロフ細菌におけるシデロフォア

Methylobacterium 属細菌における鉄吸収に関わるシデロフォアの分子解析

谷 明生

北海道大学・
農学研究院

佐藤 昌直・助教

植物プランクトン ヘテロシグマの発現遺伝子配列の網羅的解析

ヘテロシグマのトランスクリプトーム解析により、発現遺伝子配列のデータベース作成を行っている

植木 尚子

神戸大学・農学部

宅見 薫雄・教授

オオムギ RNA-Seq 法のコムギ解析への応
用

コムギの遺伝子配列取得にオオムギで確立した RNASeq 解析法を応用する

佐藤 和広

京都大学・農学部

冨永 達・名誉教授

チガヤの RNA-Seq 法によるマーカー作成

チガヤの分子マーカー開発による生態型解析への応
用

佐藤 和広

名古屋大学・農学部

芦苅 基行・教授，
永井 啓祐・助教

ジベレリン関連遺伝子の機能解析

オオムギのジベレリン関連遺伝子を同定し、形質転換オオムギの表現型を解析する

久野 裕・佐藤 和広

大阪公立大学・理学部

小林 康一・准教授

プラスチド相転換ダイナミクス

オオムギの組織分化転換における色素体の制御機構
を解明する

久野 裕

理化学研究所・環境資源科学研究センター

岩瀬 哲・上級研究員

プラスチド相転換ダイナミクス

オオムギの脱分化・再分化における色素体の制御機構を解明する久野 裕

愛媛大学・農学部

八丈野 孝・准教授

プラスチド相転換ダイナミクス

オオムギの絶対寄生菌侵入時における色素体の制御機構を解明する

久野 裕

京都大学・農学部

吉川 貴徳・助教

オオムギの形態形成に関わる遺伝子の機能
解析

オオムギの穂の形態形成に関わる遺伝子機能の解析

久野 裕・武田 真

オオムギ種子の機能性成分を制御する遺伝子の解明

オオムギ種子の水溶性食物繊維含量等にかかわる遺伝子を探索し、実証試験をしている

武田 真

NARO 農業・食品産業 塔野岡 卓司・
技術総合研究機構
プロジェクトリーダー

概要

受入研究者名所属機関・部局

共同研究者名・職名

共同研究課題名

概要

受入研究者名武田 真

63

栃木県農業試験場

渡邉 浩久・室長

大麦縞萎縮病抵抗性とビール醸造特性の遺伝解析

土壌伝染性の大麦縞萎縮病の抵抗性とビール醸造特性の原因遺伝子の特定を目指している

愛媛大学・農学部

八丈野 孝・准教授

絶対寄生および半活物寄生に対する Ca2+流動の制御機構と生理的意義の解明

オオムギの形質転換体を用いて、うどんこ病菌の感久野 裕・松島 良・
染時の生理現象について調査している
近藤 秀樹・三谷 奈見季

岡山大学・農学部

能年 義輝・准教授

オオムギと紋枯病菌の感染生理学的研究

オオムギ遺伝資源を用いて、紋枯病菌に対する抵抗
久野 裕・松島 良・性の評価を行っている
近藤 秀樹・三谷 奈見季

農研機構・次世代作物開発研究センター

米丸 淳一・
ユニット長

限られた育種母本から高能率に遺伝的多様性を生み出す多系交雑育種システムの開発

自殖性作物において表現型選抜効率に優れた高能率のゲノム選抜育種技術を構築する

山本 敏央・古田 智敬

北海道大学・
大学院農学研究院

貴島 祐治・教授

イネ小胞子に潜在する個体分化能と倍数化
能を活用した育種基盤の新構築

アジアイネとアフリカイネの４倍体がなぜ雑種不稔性を回避できたのか倍数化能と関連させて探る

山本 敏央・長岐 清孝

九州大学・
大学院農学研究院

吉村 淳・特任教授

ミャンマーにおけるイネゲノム育種システ
ム強化ミャンマーにおいてイネゲノム育種を実施する基盤
を構築する

古田 智敬

東京農業大学・農学部

和久井 健司・教授
杉山 立志・准教授
田中 啓介・准教授

ChIP-Seq 解析によるショウガ目植物の動原体 DNA 配列の同定

ChIP-Seq 解析によりショウガ目植物の動原体 DNA
配列を明らかにする

長岐 清孝

拠点事業以外の共同研究（国際）(List of Collaborations besides the Joint Projects at the Joint Usage/Research Center (International))
Researcherʼs Name, Title

Subject of collaborative research

Summary

Accepted
staff

64

Country

Affiliation

China

Shanghai Center for Plant
Stress Biology, Chinese
Academy of Sciences

Chanhong Kim,
Principal Investigator

Characterization of photodamaged D1
in the Photosystem II repair cycle

Specific oxidation of amino acid residues in
D1 protein is being characterized by mass
spectrometry

坂本 亘

Kenya

International LivestockResearch Institute

Josiah Musembi Mutuku,
Researcher

Development of bio-pellets usingsorghum

Establishment of collaborative platform forsorghum field tests in Kakamega, Kenya

坂本 亘

China

Inner Mongolia Universityof Science and Technology

Lingang Zhang,
Professor

Characterization of GTPase activity in
VIPP1 protein

GTP-hydrolysis activity detected in VIPP1 protein
in vitro is being characterized

坂本 亘FranceInstitute de Biologie
Physico-Chimique, CNRSCathrine de Vitry,
Senior Researcher

Influence of FtsH in oxidataed D1
protein in Chlamydomonas

Degradation of D1 reaction center protein is being
characterized in Chmamydomonas ftsh mutant

坂本 亘

Germany,etc

IPK, etc

Nils Stein, professor, et al.

Barley pan-genome project

Determination of the genome structure of 20
accessions

平山 隆志

China

Sun Yat Sen University

Yin Ye, Lecturer

孔辺細胞におけるアブシシン酸受容体の多様性に関する研究

アブシシン酸が気孔開口に及ぼす影響について
分枝遺伝学的に解析している

森

泉

FranceAtomic Energy andAlternative Energies
Commission

Nathalie Leonhardt,
Scientist

Studies on the effect of air pollutantson plants

Molecular biological analysis of the impact ofsulfur dioxide on stomatal behavior

森泉FranceUniversite Clermont
Auvergne, CNRS

Olivier Mathieu,
Principal Investigator

Analysis of gene silencing mechanism

Functional analysis of gene silencing mutant inArabidopsis

池田 陽子

RussiaInstitute of Biomedical
Problems, Russian
Academy of Science

Vladimir Sychev,
Vice President

Effect of space environment on plantviability and adaptation

Barley seeds exposed to outer space were
examined for seed germination and gene
expression

杉本 学

RussiaInstitute of Fundamental
Medicine and Biology,
Kazan Federal University

Rushan Sabirov,
Professor

Function of genes and proteins inplnats produced under extreme
environment

Genes expressed in Brachypodium under UV
irradiation were identified to examined function

杉本 学

Summary

Accepted
staff

イネ重金属集積に関する研究

イネカドミウムやヒ素の集積に関与する遺伝子
の同定

馬 建鋒

Renfang Shen,
Professor

植物アルミニウム耐性機構の研究

イネを中心に植物のアルミニウム耐性に関する
生理、分子生物学的研究

馬 建鋒

福建農林大学

Zhichang Chen,
Professor

イネマグネシウム輸送に関する研究

イネのマグネシウム輸送体の同定と機能解析

馬 建鋒

FranceCentre National de laRecherche Scientifique

Catherine Curie,
Professor

マンガン輸送体の機能解析

マンガン輸送体の AtNramp1 の細胞局在に関す
る研究

馬 建鋒

Germany

Leibniz-Institute of Plant
Genetics & Crop Plant
Research

Nicolaus von Wirén,
Professor

オオムギマンガン集積機構の解析

オオムギマンガン輸送体の機能解析

馬 建鋒

Australia

Australian National
University

Caitlin S. Byrt,
ARC Future Fellow

Boosting barley and rice stress
tolerance in Australia and Japan

Studies on ion permeable aquaporins in barley
and rice to improve crop stress tolerance

且原 真木

USA

Center for Plant Science
Innovation, University of
Nebraska Lincoln

Toshihiro Obata,
Assistant Professor

Metabolome analysis in tomato fruit
which suppressed or over-expressed
SlALMT geneWe are collaborating to determine metabolites intomato fruit, to assess physiological function of
the SlALMT genes

佐々木 孝行USA

Plant Biology andPathology,
Rutgers University

Bradley I. Hillman,
Professor

Characterization of mitoviruses
infecting the chestnut blight fungus

Investigation of host range of and host defense
against a mitochondrially replicating mitovirus

鈴木 信弘

UK

Faculty of Natural
Sciences, Imperial College
LondonIoly Kotta-Loizou,
Assistant Professor

Taxonomy of fungal viruses

Taxonomical organization of fungal and plantchrysoviruses

鈴木 信弘

Spain

Centro Nacional
Biotecnología/CSIC

José R. Castón,
Professor

Quadrivirus structural analysis

Cryo-EM and 3D-reconstruction of Rosellinia
necatrix quadriviruses

鈴木 信弘

Spain

Instituto de Agricultura
Sostenible C.S.I.C.

Carlos José López
Herrera, Researcher

Utilization of fungal viruses as
biocontrol of the white root rot
diseaseSearch for fungal viruses with potential as
biocontrol agents against white root rot in
avocado鈴木 信弘

Country

Affiliation

Researcherʼs Name, Title

China

中国南京農業大学

Fangjie Zhao,
Professor

China

中国科学院南京土壌研究
所

China

Subject of collaborative research

65

66

Summary

Accepted
staff

Taxonomy of fungal viruses

Taxonomical organization of fungal partitiviruses

鈴木 信弘

Jiatao Xie,
Professor

Taxonomy of fungal viruses

Taxonomical organization of fungal
megabirnavirus

鈴木 信弘

Forschungsanstalt
für Wald, Schnee undLandschaft WSL

Daniel Rigling,
Group Leader

Virocontrol of chestnut blight

Exaination of various viruses for their biocontrol
potential

鈴木 信弘

Philippines

International Rice
Research InstituteAna Eusebio-Cope,
Program Manager

Characterization of viruses infecting
rice-associated fungi

Virus hunting of rice blight fungal isolates andtheir characterization

鈴木 信弘

Bangladesh

Plant Pathology Division,
Bangladesh Agricultural
Research Institute

Md. Iqbal Faruk, Senior
Scientific Officer

Characterization of viruses soilinhabitant fungi

Molecular haractgerization of viruses isolated
from Bangladeshi isolates of plant pathogenic
soil-inhabitant fungi

鈴木 信弘

Pakistan

Crop Diseases ResearchInstitute (CDRI), National
Agricultural ResearchCentre (NARC)

Atif Jamal, Senior
Scientific Office

Characterization of megabirnaviruses

Identification of internal ribosomal entry sites infungal megabirnaviruses

鈴木 信弘

Pakistan

Atta-ur-Rahman Schoolof Applied Biosciences(ASAB), National
University of Sciences andTechnology

Muhammad Faraz Bhatti,
Professor

Characterization of fungal viruses

Molecular and biological characterization of anovel botybirnavirus identified from a Pakistaniisolate of Alternaria alternata

鈴木 信弘

China

Northwest A&F University

Liying Sun,
Professor

Molecular interactions between plantand pathogenic viruses

Coat protein of Chinese wheat mosaic virusinterferes with autophagy and promotes virus
infection

近藤 秀樹

Australia

University of Queensland

Ralf Dietzgen, AssociatedProfessor

Studies on the diversity of plant
rhabdoviruses

Phylogenetic analyses of plant rhaviruses basedon the L (RdRp) proteins

近藤 秀樹

China

Qingdao Agricultural
University

Ida Bagus Andika,
Professor

Characterization of cross-kingdom
virus transmission

Nonpersistent acquisitions of plant viruses byplant-associated fungi

近藤 秀樹

Country

Affiliation

Researcherʼs Name, Title

FinlandNatural Resources
Institute Finland (Luke),
Forest health andbiodiversity

Eeva Vainio,
Researcher

China

College of Plant Scienceand Technology,
Huazhong Agricultural
University

Switzerland

Subject of collaborative research

67

Summary

Accepted
staff

Taxonomy of Rhabdoviridae

Virus classification in the family Rhabdoviridae

近藤 秀樹

Wajeeha Shamsi,
Postdoctoral Researcher

Study on the virus diversity inHymenoscyphus fraxineus

Five RNA mycoviruses were detected in two
native populations of H. fraxineus, the causal
fungal agent of ash dieback

近藤 秀樹

Shanghai Center for Plant
Stress Biology

Daisuke Miki,
Principal Investigator

解糖系酵素 GAPC1 を介したヒスト
ンアセチル化の制御機構

解糖系酵素 GAPC1 を介したヒストンアセチル化の制御機構の解析

河野 洋治

China

Yangzhou University

Qiong Wang,
Assistant Professor

NLR 型受容体によるイネ免疫の制御機構の解析

NLR 型受容体の分子生物学的、生化学的解析

河野 洋治

China

Chinese Academy ofAgricultural Sciences

Yuying Li,
Doctoral Research Fellow

NLR 型受容体によるイネ免疫の制御機構の解析

NLR 型受容体の分子生物学的、生化学的解析

河野 洋治

China

Jiangxi Agricultural
University

Huimin Jia
Assistant Professor

NLR 型受容体によるイネ免疫の制御機構の解析

NLR 型受容体のバイオインフォマティクス解析

河野 洋治

China

Jiangxi Agricultural
University

Pingyu Wang
Doctoral Research Fellow

植物免疫に関わるホルモン様ペプチ
ドの解析

植物免疫に関わるホルモン様ペプチドのシグナ
ル伝達の解析

河野 洋治

TurkeyMugla Sitki Kocman
University

Nurettin Sahin,
Professor

Isolation of halotlerant lanthanidedependent methylotrophs

Isolation of halotolerant C1-compound utilizing
bacteria from mangrove forest trees

谷 明生

Qatar

Qatar University

Helmi Hamdi, Research
Assistant Professor

Conventional and non-conventionalorganic amendments to improve soil
structure and productivity in Qatar

Reuse of treated sewage effluent for fodder
production

谷 明生

ThailandPrince of Songkla
University

Suppasil Maneerat,
Associate Professor

Survival and stability of Lactobacillus
plantarum as a freeze-dried
autochthonous starter culture forstink bean fermentation

Investigation of stability of Lactobacillus for
production of fermented food谷 明生

Los Lagos University

Gonzalo Gajardo,
Professor

Isolation and characterization ofmarine microbe that affect algal
bloom dynamics

Marine bacteria that promote or terminate algal
bloom are being isolated and their effect on algal
growth is bein characterized

植木 尚子

IPK

Nils Stein,
Professor

Barley pan-genome project

De novo assembly of principal barley haplotypes

佐藤 和広

Country

Affiliation

Researcherʼs Name, Title

Australia

University of Queensland

Peter Walker, Professor

Switzerland

Forschungsanstalt
für Wald, Schnee undLandschaft WSL

China

Chile

Germany

Subject of collaborative researchCountry

Affiliation

Researcherʼs Name, Title

Subject of collaborative research

Summary

Accepted
staff

IPK

Nils Stein,
Professor

Sequencing analysis of barley genetic
resources

Partial sequencing analsis of barley accessions in
genebanks

佐藤 和広

U.K.

The Sainsbury Institute

Matthew Moscou,
DoctorCloning of barley disease resistancegenes

Isomation and annotation of barley disease
resitance genes

佐藤 和広

U.S.A

Oregon State University

Patrick Hayes,
Professor

Food barley development

Development of functional food barley cultivar in
the USA佐藤 和広

International

Swedish University ofAgriculture

Roland von Bothmer,
Professor

International Barley Core Collection

Establishment and utilizaztion of core set ofbarley genetic resourdes in the world

佐藤 和広

Kazakhstan

Institute of plant biology
and biotechnology

Yerlan Turuspekov,
Doctor

Evaluation of barley in semi-arid
environment

Evaluation and analysis of barley germplasm inthe dry land conditions in Kazakhstan

佐藤 和広

Ethiopioa

Hawassa University

Degu Hewan Demissie,
DoctorDevelopment of acid soil tolerantbarleyIntroduction of acid soil tolerant barley andmolecural selection techniques in Ethiopia

佐藤 和広

Oregon State University

Patrick Hayes,
Professor

Genome editing for producing hullless barley

Genome editing method is performed to produce
hull-less barley using lines generated in OSU

久野 裕・
佐藤 和広

IPK

Jochen Kumlehn,
Doctor

Genome editing of the genes related
to seed dormancy in barleySite-directed mutagenesis is performed formodification of the genes related to seed
dormancy in barley

久野 裕・
佐藤 和広

Chinese Academy of
Sciences

Chunxiang Fu,
Professor

Genetic modification of lingnin
biosynthesis in barley

Genetic modification of lingnin biosynthesis isperformed to increase the efficiency of processing
for biomass in barley

久野 裕

IPK

Jochen Kumlehn,
Doctor

オオムギの内穎裂開遺伝子の機能解析オオムギ内穎裂開遺伝子のゲノム編集を利用した遺伝形態学的解析

武田 真

Queen Mary University of
LondonGuy Hanke, Doctor

オオムギの GLK2 遺伝子の機能解析

オオムギ GLK2 遺伝子の CRISPER 系統を利用した遺伝生理学的解析

武田 真

Germany

68

U.S.A

Germany

China

GermanyUKAnnual Report 2022
Director: Takashi Hirayama
Editorial Members: Yuko Hojo		

Sanae Rikiishi

		Manabu Sugimoto
Published by Institute of Plant Science and Resources, Okayama University
Chuo 2-20-1, Kurashiki 710-0046, Japan
TEL: +81-86-424-1661
FAX: +81-86-434-1249

岡山大学資源植物科学研究所報告 第 30 巻
（Annual Report 2022）
令和 5 年 3 月 25 日
令和 5 年 3 月 31 日
発行

所

岡山大学資源植物科学研究所
710-0046 倉敷市中央 2 丁目 20-1
TEL：086-424-1661
FAX：086-434-1249

編集委員

北條
力石
杉本

印

友野印刷株式会社

刷

所

印刷
発行

優子
早苗
学