ポリアミン
ポリアミン Vol.2 No.1
Polyamine
Polyamine

Apr. 2015

巻頭言
松藤 千弥
シリーズ ポリアミン研究柏木 敬子
シリーズ 実験手技ノート
森屋 利幸
東 恭平
学会レビュー
早田 邦康
草薙 大輔
年会報告
石田 真巳
会計報告
学会より

日本ポリアミン学会

The Japanese Society of Polyamine Researchポリアミン Vol.  2  No.  1
Polyamine

Apr.  2015

巻頭言
学会を「世界への扉」に
シリーズ

松藤

千弥

1

ポリアミン研究

原核細胞及び真核細胞のポリアミン輸送系の性質とその生理的意義
シリーズ

柏木

敬子

２

実験手技ノート

はじめに

大城戸

真喜子

12

HPLC によるポリアミン分析

森屋

利幸

15

ポストカラム HPLC 法によるポリアミン分析
編集部より筆者への質問コーナー

東

恭平

19

26

学会レビューThe Third International Conference on Polyamines: Biochemical, Physiological and Clinical
Perspectives への参加報告

早田

日本分子生物学会に参加して

草薙

邦康
大輔

28
30

年会報告
第 6 回年会総括

石田

真巳

31

日本ポリアミン学会

第６回評議員会議事録

日本ポリアミン学会

第６回総会議事録

会計報告

36

学会より

37

編集後記

39

32
34

日本ポリアミン学会

The Japanese Society of Polyamine Research巻頭言

ポリアミン (2015) 2:1

学会を「世界への扉」に
松藤千弥

日本ポリアミン学会

事務局長

東京慈恵会医科大学

学長

学会誌「ポリアミン」の通算第 3 号発行の運びとなりました。毎号読み応えのある内容で、会員相互をつなぐ媒体として今後がとても楽しみです。広報委員会の献身的なご努力に敬意を表します。
創刊号の巻頭言では大島泰郎会長が「自由と自主の精神」の大切さを、
第 2 号では大澤仲昭先生が「学際性」という本学会が誇るべき特長を、それぞれ説いてくださいました。私は本学会に期待されているもうひとつの役割、「世界への扉」について書いてみたいと思います。
本学会の前身である日本ポリアミン研究会が発足したのは 1985 年ですが、その翌年の 1986 年には日本で最初の国際ポリアミン会議が開かれました。その後 1990 年、1996 年、2004 年と国際会
議の開催を重ねました。世界中のポリアミン研究のコミュニティはそれほど大きいわけではありませんが、適度な数の研究者がアメリカを中心として、イタリア、北欧、イスラエルなどに散らばっています。最近ではアジア諸国にも研究者が増えているようですが、日本は以前からポリアミン研究が盛んな国のひとつです。世界のポリアミン研究者は、国際会議で日本に来るのを楽しみにしているようなふしがあります。最近の国際会議は、日本ポリアミン学会の第 1 回年会を兼ねて静岡県御殿場市で開催された「2010 国際ポリアミン会議 ­医学・生命科学への展開­」でした。日本ポリアミン学
会は世界への扉として誕生したことになります。
もともと日本ポリアミン研究会は、手軽な自由参加を優先し、年会費を徴収せずに運営されてきました。これを学会に改組した最大の理由は財政的なものだったのです。ポリアミン研究会当時は、
大澤仲昭先生が理事長を務められていた日本国際ポリアミン研究基金が財政基盤であり、ポリアミンの医療応用への期待や国の好調な経済のおかげで手厚い支援が得られていました。しかし 2000 年代になると企業等からの寄付がなかなか集まらなくなりました。国際会議には、会場費や海外からの講演者の招聘などでお金がかかります。日本で国際会議を開催していくには、学会として自己資金を準備しなければならなかったのです。今学会では、皆さんの年会費や、賛助会員などからの寄付を、こつこつ貯めている状況です。一方、ホームページは自前で作り、学会誌もご覧のように電子出版の形にして支出を抑えています。次の国際会議のためにも、皆さんが年会費を納めてくださることが大切であることをどうかご理解ください（つい事務局長らしいことを書いてしまいました）。
本学会の「世界への扉」としての役割は、国際会議の開催だけではありません。アメリカで隔年開催される「ポリアミンに関するゴードン会議」をはじめ、世界各地の関連会議の情報を届けたり、若手研究者の渡航補助をしたりしています。私自身の経験からも、研究による国際交流は、研究を前進させ、キャリアを作り、視野を広げる貴重な機会であり、何よりも楽しみであります。本学会がみんなの「世界への扉」として役立てるように、ご協力をお願いいたします。
-1-

日本ポリアミン学会

The Japanese Society of Polyamine Research

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ポリアミン研究

ポリアミン (2015) 2:2-11

原核細胞及び真核細胞のポリアミン輸送系の性質とその生理的意義柏木敬子

千葉科学大学薬学部病態生化学研究室（〒 288-0025

銚子市潮見町 15-8）
連絡先柏木敬子、e-mail: kkashiwagi@cis.ac.jp

細胞増殖・分化に重要な役割を果たすポリア

関与している 2)。このポリアミンの細胞内濃度調

ミン［プトレッシン（PUT），
スペルミジン（SPD），

節には，ポリアミン輸送が生合成，分解と共に，

スペルミン（SPM）］1,2) の細胞内濃度は，生合成，非常に重要な役割を担っている。このポリアミン

分解，輸送により調節されている。本総説では，輸送系について，筆者らの知見を中心にして，こ大腸菌，酵母，原生動物，植物及び哺乳動物で，れまでに明らかになったことを以下に述べる。

これまで同定されているポリアミン輸送系の性質とその生理的意義について解説する。

2

大腸菌のポリアミン輸送系
大腸菌でこれまでに判明しているポリアミン輸

1

はじめに

送系を示す（図 1）3)。細胞の外側の pH が中性

ポリアミンは，低分子生理活性物質として，の場合は，ABC（ATP binding cassette）輸送系

Mg ，ATP， グ ル タ チ オ ン と 共 に， 細 胞 内 にに属する PotA, B, C, D の 4 種の蛋白質から成る

mM オーダーの濃度で存在し，主として RNA とSPD 優先取り込み系と，PotF, G, H, I の 4 種のの結合により，蛋白質合成や RNA の機能調節に蛋白質から成る PUT 取り込み系が機能し，ポリ

2+

SPDඃඛ
ྲྀ䜚㎸䜏⣔
(PotABCD)

PUT≉␗ⓗྲྀ䜚㎸䜏⣔(PotFGHI)

D

F

SPD

PUT

B

H

A

C
A

ATP ADP+PiG䝫䝸䜰䝭䞁᤼ฟ⣔CAD/Lys
PUT/Orn஺᥮⣔஺᥮⣔(CadB)(PotE)
Orn

SPD᤼ฟ⣔ PUT㍺㏦⣔(MdtJI)(PuuP)
PUT

Lys䝨䝸䝥䝷䝈䝮

PotE

I

CadB

Mdt
J I

G

ATP ADP+Pi

PuuP

⣽⬊⭷
⣽⬊ෆ

PUT

CAD

SPD

図１．大腸菌のポリアミン輸送系
大腸菌には ABC 輸送系に属する２種のポリアミン取り込み系（SPD 優先取り込み系 PotABCD 及び PUT 特異的取り込
み系 PotFGHI），APC 輸送系に属する２種のポリアミン排出系（PUT/ オルニチンアンチポーター PotE 及びカダベリン/ リジンアンチポーター CadB），SMR に属する SPD 排出系（MdtJI）及び PUT 輸送系（PuuP）が存在する。

-2-

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ポリアミン研究

ポリアミン (2015) 2:2-11

A

B

PotD

C-domain

W229!

E171! D168!

Q327

N3
N2

N1

E36

T35

Y37

W34

Y293

S83

Y85

W255

LinkerD257

N-domain

図２．PotD 蛋白質の結晶構造（A）と基質 SPD 認識に関わるアミノ酸残基（B）
A. N- ドメインが下に，C- ドメインが上に書かれている。α - へリックスを緑で，β - シートを紫で，コイルとループ構造を黄色で，及び，ABC 輸送系の基質結合蛋白質間で保存されている配列を青で示した。基質 SPD は二つのドメイン間の溝に存在している。SPD 結合部位を４個の酸性アミノ酸残基の側鎖で示した。B. 酸性アミノ酸残基，セリン及びスレオニンを楕円で，芳香族アミノ酸残基を長方形で示した。結晶構造解析及びアミノ酸変異蛋白質の活性測定より，
SPD 認識に強く関与するアミノ酸残基を黄色で，中程度に関与するアミノ酸残基をピンクで示した。SPD をジグザグ構造の赤で示し，極性相互作用を破線で示した。

アミン濃度を調節している。PotABCD 系の基質認識する PotD 蛋白質中のアミノ酸残基も明らか

結合蛋白質である PotD の SPD 結合部位が X 線となっている（図 2）5)。また，取り込みに必要

結晶構造解析で明らかとなり 4)，かつ，SPD をなエネルギーである ATP の ATPase である PotA

図３．PotA 蛋白質のアミノ酸配列と活性に関与するアミノ酸変異
378 残基から成る PotA 蛋白質のアミノ酸配列中の，ABC 輸送系の ATPase に保存されている Walker motif A，ABC
signature 及び Walker motif B を示した。赤字で示した変異体は，random mutagenesis により得られた SPD 輸送
活性と ATPase 活性が低下した変異体（F27L, F45L, L60F, L76P, D172N 及び E297K）である。PotA E297K 変異
体では輸送活性及び ATPase 活性が低下するばかりでなく，SPD による ATPase 活性阻害が減弱したことから，PotAの C 末端側が SPD による feedback 阻害に関わることが明らかになった。その他，Cys26 は 8-azido ATP 結合部位であるとともに，PotA 二量体化に必要であり，Cys54 は膜貫通蛋白質 PotB との相互作用に関わっている。PotA V135M
変異は，SPD 輸送欠損株の大腸菌 NH1596 における変異である 40)。

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ポリアミン (2015) 2:2-11

蛋白質中の活性に関与するアミノ酸残基と，SPD

feedback 阻害を受けた。

による feedback 阻害に関わるアミノ酸残基が同次いで，APC (amino acid-polyamine-organo-

定された 6)。ATPase の活性中心は ABC 輸送系

cation) 輸送系に属する PotE（PUT ／オルニチ

間で保存性の高い PotA 蛋白質の N 末端側に存

ンアンチポーター）と CadB（カダベリン／リジ

在し，SPD によ る feedback 阻 害 に 関 わ る ア ミ

ンアンチポーター）の性質を明らかにした（図 1）ノ酸残基は PotA 蛋白質の C 末端側に存在して8,9)いた（図 3）6)。さらに，膜貫通領域を構成する

細胞外に存在するオルニチンまたはリジンを取りPotB, PotC 蛋白質に関しては，細胞膜への蛋白込み，細胞内で脱炭酸し，PUT またはカダベリ

質の挿入，PotD 蛋白質との結合，SPD の認識，ンを排出し，環境を中性化する。両輸送系ともオ

ATPase 活性に関与するアミノ酸残基を同定した

ルニチン脱炭酸酵素遺伝子（speF）またはリジン（図 4）7)。また，ポリアミンが細胞内で過剰に脱炭酸酵素遺伝子（cadA）とオペロンを形成しなると，両取り込み系は，ATPase の阻害によりている。PotE と CadB は 12 膜貫通領域を有し，。これらの輸送系は外部環境が酸性の条件で

A PotB䛸PotC⺮ⓑ㉁䜰䝭䝜㓟ṧᇶ䛾䝇䝨䝹䝭䝆䞁ྲྀ䜚㎸䜏άᛶ䛻䛚䛡䜛ᶵ⬟
PotB

ᶵ⬟

W8

⣽⬊⭷䜈䛾ᤄධY43

PotC

W100 L110

Y261

W46

D108





E169

S196

D198





D199



PotD䛸䛾⤖ྜ䝇䝨䝹䝭䝆䞁ㄆ㆑

ATPaseάᛶ


















B PotABCD」ྜయ䛻䜘䜛䝇䝨䝹䝭䝆䞁ྲྀ䜚㎸䜏䝰䝕䝹⤖ྜ⺮ⓑ㉁䝇䝨䝹䝭䝆䞁

D
PotBཬ䜃PotC䛾ཎᙧ㉁⭷䜈䛾ᤄධ

43䝨䝸䝥䝷䝈䝮
⣽⬊⭷

8

⣽⬊㉁

W

B
A

C

110
Y

L

100
W
261

A

㟼Ṇ≧ែ
ADP +Pi +䝇䝨䝹䝭䝆䞁

PotD䛸䛾⤖ྜ

199
198
46 D
W S 196
D

108
169
D
E

䝇䝨䝹䝭䝆䞁ㄆ㆑
ATPaseάᛶ261ኚ␗䛻䜘䜚άᛶୖ᪼

㑄⛣≧ែ
ATP

図４．PotABCD 輸送系における SPD 取り込みモデル
A. PotB と PotC のアミノ酸残基の機能。B. SPD 取り込みモデル。PotB Trp8 残基は PotB 及び PotC の細胞膜への挿入に関与し，PotB Tyr43, Trp100, Leu110, PotC Trp46, Asp108, Ser196, Asp198 は，PotABC 複合体と PotD 蛋白質との結合に必要であり，PotB Leu110, Tyr261, PotC Asp108, Asp198, Asp199 は膜貫通領域を SPD が通過する際の SPD の認識に関与し，PotB Trp100, Tyr261, PotC Asp108, Glu169, Asp198 は ATPase 活性に関与する 7)。ペリプラズムに存在する
PotD に SPD が結合し，PotB と PotC が形成する膜貫通領域を通り，PotA ATPase による ATP の加水分解エネルギーを利用して SPD が細胞内に取り込まれる。SPD が細胞内に充分存在するときは，SPD は PotA の C 末端側に作用してATPase を阻害し，SPD 取り込みを阻害する。

-4-

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図５．CadB と PotE の中心溝の違い
結晶構造が報告された AdiC（アグマチン / アルギニンアンチポーター）の構造 41) に基づき，CadB と PotE の構造モデ
ルを作製し，基質結合部位である中心溝を示した。上図は細胞外から見た図で，白四角内に黒字で番号を示してある膜貫通領域が中心溝を形成している。CadB と PotE の中心溝を形成する膜貫通領域 10 と 6a の角度の違いを右の拡大図で示した。下図は中心溝を示し，カダベリン（NH2(CH2)5NH2）を結合する CadB の方が，PUT（NH2(CH2)4NH2）を結合する PotE より，中心溝が大きい 10)。

12 膜貫通領域で形成される基質認識に関わる中

新しい PUT 輸送蛋白質として Km 値がやや高い

心腔の大きさは，基質に対応しており，CadB の（155 µM）YeeF が報告されている 15)。

方が PotE に比べ，大きかった（図 5）10)。
こ の 他 に， 過 剰 SPD を 排 出 す る 系 と し て，

3

酵母と原生動物のポリアミン輸送系

SMR（small multidrug resistance）輸送系に属

出芽酵母でこれまでに判明しているポリアミ

する４ヶ所の膜貫通領域を有する MdtJ と MdtI

ン 輸 送 系 を 図 6 に 示 す。 取 り 込 み 系 と し て は蛋白質が同定された（図 1）11)。SPD の排出には

AGP216), GAP117), DUR318) 及び SAM318) の４種

両蛋白質が必要であり，活性に必要なアミノ酸残が報告されている。AGP2 は SPD との親和性は基は主として細胞質に存在した。大腸菌には 33

高いが輸送活性が低く，環境応答のセンサーと種の低分子物質を排出する輸送系が存在するが，して働いており，主として DUR3 と SAM3 がポ

MdtJI 輸送系のみが SPD の排出に関与していた。

リアミン輸送活性を担っている 18,19)。DUR3 のまた，グルコースの代わりに PUT を炭素源とPUT 及 び SPD に 対 す る Km 値 は そ れ ぞ れ 479

して大腸菌を培養した場合には，PUT が細胞内

µM と 21.2 µM，SAM3 の PUT 及 び SPD に 対にある程度蓄積しても feedback 阻害がかからな

する Km 値はそれぞれ 433 µM と 20.7 µM であい PuuP 蛋白質が機能する（図 1）12,13)。この場る。酵母の野生株（YPH499）は培地中に PUT合，高濃度の PUT がグルタミン酸，コハク酸にが存在しなくとも増殖するが，ポリアミン生合成

変換され，大腸菌は増殖可能となる 14)。その他に，

律速酵素オルニチン脱炭酸酵素を欠損する（Δ-5-

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蛋白質が post-Golgi 分泌小胞に存在するが，主として TPO1 と TPO5 が排出蛋白質として機能
SPM

す る 20,21)。 ま た，TPO1 は protein kinase C 及
TPO3

PUT
SPD
SPM

TPO4

TPO1

PUT
SPD

TPO5

CK1
PKC
PKA

post-Golgi

PUT

Vacuoleび casein kinase 1 に よ り 活 性 化 さ れ，cAMP-

SAM3

TPO2

PUT

DUR3
PTK2

dependent protein kinases 1 と 2 により細胞膜SPDへの挿入が促進される 20)。その他に，UGA4 蛋

SPM

白質が液胞に存在し，PUT を液胞中に蓄積する

GAP1

（図 6）
。

22)

UGA4

AGP2

原生動物には高親和性のポリアミン輸送系が存 在 す る。Leishmania  major の LmPOT1 は PUT
を 優 先 的 に 取 り 込 み，SPD も 取 り 込 む こ と がで き る。PUT に 対 す る Km 値 は 10.2 µM で ある 23)。 ま た， ポ リ ア ミ ン 生 合 成 系 を 有 し な いTrypanosoma  cruzi では SPD を主に取り込む輸送

A. 䝥䝖䝺䝑䝅䞁Ꮡᅾୗཬ䜃㠀Ꮡᅾୗ䛾⣽⬊ቑṪ
Wild type

10

A540

図６．出芽酵母のポリアミン輸送系
出芽酵母では，細胞膜のポリアミン取り込み系として，
AGP2, GAP1, DUR3 及 び SAM3 が 同 定 さ れ，AGP2
は環境応答のセンサーとして働き，輸送活性の大部分はDUR3 と SAM3 が担っている。DUR3 は PTK2 による
Thr250, Ser251 並びに Thr684 のリン酸化により活性化される。UGA4 は液胞に PUT を取り込む。ポリアミン
排出系として細胞膜に TPO1 〜 TPO4 が存在し，TPO5
蛋白質が post-Golgi 分泌小胞に存在するが，主としてTPO1 と TPO5 が排出蛋白質として機能する。TPO1 は，protein kinase C（PKC）及び casein kinase 1（CK1）による Ser19 並びに Thr52 のリン酸化により活性化され，cAMP-dependent protein kinases 1 と 2（PKA） による Ser342 のリン酸化により細胞膜への挿入が促進される。

+0.05 mM
PUT

.1
.01

, None, +0.05 mM PUT

040

nmol/mg protein

この株で，DUR3 と SAM3 の遺伝子を欠損させると，増殖が著しく遅くなった（図 7A）
。この増

20

40

60

B. 䝫䝸䜰䝭䞁ྵ㔞
50

えても増殖が遅くなり，両方の遺伝子を欠損させΔspe1 Δdur3 Δsam3

1spe1）と，増殖には PUT が必要になる（図 7A）。
ると，どちらか一方の遺伝子欠損で，PUT を加

Δspe1

Wild type+0.05 mM PUT

None

0

, PUT

20

40

Time (h)
, SPD
Δspe1

None

60

0

20

40

60

, SPM
Δspe1 Δdur3 Δsam3

30
20
10

0

0.05mM PUT

殖速度は細胞内ポリアミン濃度と強く相関してい図７．出芽酵母 DUR3 と SAM3 によるポリアミン取り込み
A. PUT 存在下及び非存在下における細胞増殖。酵母の野 生 株（YPH499） で は 培 地 中 の PUT 有 無 に 関 係 なく細胞増殖するが，オルニチン脱炭酸酵素欠損株（Δspe1）では，培地に PUT が存在しないと増殖しない。
Δ spe1 に加え DUR3 と SAM3 遺伝子欠損株（Δ spe1
Δ dur3 Δ sam3）では，培地に PUT を加えても増殖が非常に遅くなる。B. ポリアミン含量。ポリアミン含量は細胞増殖と良く相関する。

た（図 7B）。この事実は，DUR3 と SAM3 が酵
母の主たるポリアミン取り込み系であることを示
し て い る。 ま た，polyamine transport protein
kinase 2（PTK2）により DUR3 の Ser250, Thr251
及び Thr684 残基がリン酸化され，DUR3 が活性化されることを明らかにした 18)。排出系としては TPO1 〜 4 蛋白質が細胞膜に存在し，TPO5-6-

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系として，TcPAT12 が同定され 24)，SPD に対すの Km 値は，それぞれ 24.4, 56.5, 2.2, 0.6 µM

る Km 値は 14 µM である。さらに PUT のみを取である。また，パラコートの取り込みはプロトンり込む輸送系として TcPOT1.1 と TcPOT1.2 が勾配の阻害剤である CCCP（carbonyl cyanide

同定された 25)。TcPOT1.1 と TcPOT1.2 の PUT

m-chlorophenylhydrazone） に よ り 阻 害 さに対する Km 値は，それぞれ 158 µM と 385 µM

れ る。 ま た，Oryza  sativa（ コ メ ） で， 前 述 のであった。また両蛋白質はカダベリンも取り込む

Leishmania  major の LmPOT1 及 び Trypanosoma  ことができ，Km 値は，それぞれ 18 µM と 4 µM

cruzi の TcPAT12 とのホモロジーに基づき，SPDであった。これら PUT 輸送蛋白質は，細胞増殖

優 先 輸 送 系 OsPUT1 が 27)， さ ら に OsPUT2 とに重要な SPD を合成するのに重要である。

OsPUT3.1 並びにシロイヌナズナで AtPUT1 −AtPUT3 が 同 定 さ れ た。6 種 の 輸 送 系 の Km 値

4植物におけるポリアミン輸送系

は，PUT で 25 〜 45 µM，SPD で 1 〜 15 µM

除草剤として用いられるポリアミン類似化合である 28)。これら植物のポリアミン輸送系はい物 で あ る パ ラ コ ー ト の Arabidopsis  thaliana（ シ

ず れ も LAT 輸 送 系 に 属 し， シ ロ イ ヌ ナ ズ ナ でロイヌナズナ）への取り込みの研究過程で，Lは RMV1/AtLAT1/AtPUT3，PAR1/AtLAT4/型アミノ酸輸送系（LAT）の１種である RMV1AtPUT2 及 び AtLAT3/AtPUT1 で あ る。RMV1/（AtLAT1）がポリアミンを輸送することが明ら

AtLAT1/AtPUT3 は 細 胞 膜 に，PAR1/AtLAT4/かとなった 26)。RMV1 は 490 アミノ酸残基から

AtPUT2 はゴルジ膜に，AtLAT3/AtPUT1 は小胞なり，12 膜貫通部位を有する蛋白質であり，パ体に存在する 29)。

ラコート，PUT，SPD，SPM に対する取り込み

図８．ヒト有機カチオン輸送系 hOCT2 のスペルミジン結合モデル
A. hOCT2 のポリアミン取り込み活性に関わる酸性アミノ酸残基の膜貫通領域 1 〜 12 上の位置。アグマチン，PUT 及
び SPD の取り込みに関わるアミノ酸残基を赤で，PUT と SPD 取り込みに関わるアミノ酸残基を青で示した。B. 細胞質側からのモデル。12 個のαヘリックスを水色で示し，結合する SPD を水素は白，炭素はオレンジ，窒素は青で示した。
C. 側面からの SPD 結合部位。SPD 結合に関わる酸性アミノ酸残基と共に結合に関わると考えられる芳香族アミノ酸残基（Tyr353 と Tyr447）及び極性アミノ酸（Ser471）を示し，各アミノ酸残基と SPD の１級及び２級アミノ基との距離（Å）
を示した。

-7-

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5

ポリアミン研究

ポリアミン (2015) 2:2-11

哺乳動物のポリアミン輸送系

大腸菌の PotE や CadB と異なっている（図 4 参

哺乳動物のポリアミン輸送系は，細胞内ポリ照）。

アミン量が減少すると誘導され 30)，過剰になる

大 腸 の 上 皮 細 胞 で PUT の 排 出 系 と し て，とオルニチン脱炭酸酵素の分解を促進するアン

PUT ／アルギニンアンチポーター活性を有す

チザイムにより阻害される。そのポリアミン

る SLC3A2/y+LAT 複合体が同定されている 37)。

輸送系の 3 種のポリアミンに対する Km 値は µM

SLC3A2 はスペルミジン／スペルミン N1- アセチ

オーダーであること 30) が明らかとなっているが，ルトランスフェラーゼと親和性があるので，N1-細胞膜に存在し、ポリアミンに対する親和性や輸アセチルスペルミジンも排出されると考えられて送活性が高いポリアミン輸送系の本体は依然としいる。

31,32)て明らかとなっていない。一方、近年ポリアミン

また，脳の記憶形成や脳梗塞時の細胞障害に関

輸送系についていくつか報告がなされた。

与するグルタミン酸受容体の 1 種である NMDA

最初にポリアミン輸送系と報告されたのは，ヒ（N- メチル -D- アスパラギン酸）受容体は，ポトのカチオン -Cl- 共輸送系 CCC9A（SLC12A8A）

リアミン，特に SPM により神経興奮時に活性化である。この輸送系は前述の APC ファミリー

される。この際，SPM はシナプス小胞に蓄積さに属している。SPD を優先的に取り込み，SPDれており，神経興奮時にシナプス間隙に遊離さに対する Km 値は約 5 µM と親和性は高いが，輸れる 38)。このシナプス小胞にポリアミンを蓄積

送活性はあまり高くない。また，酵母の AGP2させるポリアミン輸送蛋白質が最近同定されたとホモロジーを有するヒトのカルニチントランス（SLC18B1）39)。SPM，SPD に 対 す る Km 値 はポーター CT2（SLC22A16）は SPD を側鎖にも94 µM と 4.2 mM で，SPM に高い親和性を有しつ抗がん性抗生物質ブレオマイシン A5 の輸送系ている。SLC18B1 は 48 kDa で，ポリアミン取と報告されている 34)。カルニチンに対する Km 値

り込みは ATP 依存性である 39)。

33)

は 8 µM であり，SPD も輸送し，Km 値は 0.35
µM と親和性は非常に高いが，輸送活性は低い。

6

今後の展望

，

以上述べたように，哺乳動物の細胞膜に存在す

OCT2（organic cation transporter 2）

るポリアミンに対する親和性が高く，輸送活性の（SLC22A2）が PUT，アグマチン，SPD 取り込

高いポリアミン輸送蛋白質が未だ同定されていなみ活性を有することを証明した。しかしながら，い。この蛋白質が同定されると，原核・真核細胞

PUT，アグマチン，SPD に対する Km 値は，そのポリアミン輸送系の全貌が明らかになり，ポリ

れ ぞ れ 7.50 mM，3.27 mM，6.76 mM と 親 和

アミンの細胞増殖・分化に果たすポリアミン輸送性が低く，本来のポリアミン輸送系と異なっていの役割が明確になると思われる。近い将来，このた。しかし，OCT2 はポリアミンが低濃度でも有ポリアミン輸送蛋白質が同定されることを祈念し

意な輸送活性があり，いろいろな臓器に存在してて筆をおきたい。

最 近，Nichols と 私 共 の グ ル ー プ は35,36)

いることから，ポリアミン輸送の補助的役割を果

参考文献

たしていると考えられる。また，変異体の活性測
定より同定したポリアミンの認識部位は 12 膜貫1.

Pegg AE: Mammalian polyamine metabolism
and function. IUBMB Life. 61:880-894 (2009)

通領域の後半部に集中しており（図 8），構造は-8-

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シリーズ

2.

3.

ポリアミン研究

ポリアミン (2015) 2:2-11

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Terui Y, Saroj SD, Sakamoto A, Yoshida T,

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20.

T, Nishino K, Yamaguchi A, Kashiwagi K, &Uemura T, Tachihara K, Tomitori H, Kashiwagi
K, & Igarashi K: Characteristics of the-9-

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ポリアミン研究

ポリアミン (2015) 2:2-11

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ポリアミン研究

ポリアミン (2015) 2:2-11

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実験手技ノート

ポリアミン (2015) 2:12-14

シリーズ 実験手技ノート 第１弾
HPLC を用いたポリアミン分析 その①
はじめに

大城戸

真喜子

東京慈恵会医科大学分子生物学講座（105-8461 東京都港区西新橋 3-25-8）
連絡先

本号より、「シリーズ 実験手技ノート」の掲載

大城戸真喜子、e-mail: mohkido@jikei.ac.jp＜カラムの種類＞

を開始します。第１弾は、高速液体クロマトグラ

カラムの種類には、イオン交換カラム、順相カ

フィ（HPLC）を用いたポリアミン分析①です。

ラム、逆相カラムなどがあります。イオン交換分

カラムの選択、溶離液、条件など研究室によっ

離では、イオンの引き合う力、反発し合う力を利て異なるのではないかと思われます。また論文の用します。陽イオン交換カラムには、­に荷電しmethod には載らないようなちょっとしたコツもた交換基（-RSO3- や -RCOO- など）が基材（シあると思います。今回は HPLC によるポリアミ

リカゲルやポリマーゲル）に固定されていて、そン検出法として最も汎用されている、ポストカラ

こを通過する＋に帯電した溶質や移動相中の＋イム HPLC 法によるポリアミン分析について、森オンを親和性に応じて吸着保持します。緻密に充屋利幸先生、東恭平先生に寄稿をお願いしました。

填できるシリカゲルを基材とした方が一般的に理これから HPLC を用いてポリアミン分析をはじ

論段数や分離度はあがりますが、塩基性溶質の場

めようと思っている方にも分かりやすい内容にな合、後述するようなピークテーリングがおきやすっていると思われます。またこのシリーズを読んいです。

で、「うちのラボではこんな方法で分析している

順相分離は、カラム内固定相に存在する吸着点よ」「こんなカラムを使っているよ」などの情報への溶質の吸着現象を利用します。用いられる充を、ポリアミン学会広報委員会宛までお寄せいた

填剤にはシリカゲル、アルミナ、活性炭などがあだけますと幸いです。実験シリーズの中で HPLC

ります。中でもシリカゲルが汎用され、シリカゲを用いたポリアミン分析その②、その③・・・もルのシラノール基の（Si-OH）の酸素原子や水素企画できればと考えています。

原子が水素結合性溶質に対する吸着点となりま

お二人のポリアミン分析の紹介の前に、分離カ

す。一方シリカゲルのシラノール基は弱酸（pKa

ラムの種類、ポリアミンの特性、アミノ基の誘導3.5）で、溶離液の pH がシラノール基の pKa よ体化について簡単に説明したいと思います。なおり高い場合シラノール基が解離して（Si-O-）とHPLC の詳しい原理については、専門書や、カラ

上述の陽イオン交換体ともなります。この場合塩ム販売会社のテクニカルレポートなどを参考にし

基性溶質が強く保持され、ピークのテーリングをてください。

ひきおこします 1）。
逆相分離では、シリカゲルなどの基材に導入し- 12 -

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実験手技ノート

ポリアミン (2015) 2:12-14た脂肪族の疎水性基（C18, C8, C4, ・・）や芳香族の疎水性基（フェニル , ナフチルなど）が、＜ポリアミンの特性を利用した分離と検出＞

疎水性溶質を保持しやすい性質を利用します。逆ポリアミンは、炭素骨格部分の疎水性と多価の相カラムはシリカゲルを基材として用いたものがアミノ基によるイオン性を有します。このポリア

主流で、なかでも C18（オクタデシル基）が結ミンの性質と上述の充填剤の特性を考慮すると、合した ODS（Octa Decyl Silica）カラムが最もポリアミン分離カラムとして、陽イオン交換カラ

使用されています。基材としてポリマーを用いた

ムや、イオンペア試薬を併用した逆相カラム 3）4)

場合、ODP（Octa Decyl Polymer）, C8P, C4Pなどが候補としてあがってきます。またカラムでなどと表記されることがありますが、統一的なもはないですが、シラノール基との吸着を利用したのではなさそうです。一昔前 Κ はポリスチレン

薄層分離もよく用いられています。

の意味で使われていたことも一因かもしれません。

ポリアミンは紫外吸収がないために、検出可能な何らかのアミノ基の誘導体化反応（ニンヒドリ

逆相分離において、イオン性化合物の保持を強ン誘導体化 、o- フタルアルデヒド（OPA）誘導

めて分析する手法のひとつにイオンペア試薬を用体化やダンシル化など）が必要になります。このいた分離方法があります。イオンペア試薬には目反応をカラムの分離後に行う場合をポストカラム

的の溶質とは反対のイオン性と疎水性を有するも誘導体化、分離前に行う場合をプレカラム誘導体のを選びます。移動層に添加されたイオンペア試

化といいます。ポストカラム誘導体化では未反応

薬は逆相カラムの表面に保持されて、逆相固定相

試薬は検出されてはならないという制限があり、にイオン交換能が生まれ、イオン性化合物が保持使用できる試薬の種類が限られます（現在はニンされるようになります 。

ヒドリンと OPA のほぼ２種類に限られます）。一2）

基材としてシリカゲルが使われている場合、必方、通常、親水性が強いために逆相分離に不向き

ず未修飾のシラノール基が残存してします。シラとされているアミノ酸やポリアミンに、疎水性のノール基は上述のように塩基性溶質に影響し、ピ高い官能基をアミノ基に修飾するような誘導体化

ークテーリングを引き起こす要因となります。シができれば、逆相カラムでの分離が可能となりま

ラン化合物によるエンドキャップにより残存シラす 3）5)。また、誘導体化により塩基性溶質ではな

ノール基を除く工夫がされたカラムも市販される

くなれば、理論段数の高い ODS カラムを用いたようになりましたが、加水分解されやすくシラノ

分離も可能となります。このように、ポリアミン

ール基に戻ってしまう欠点があります。完全にシの誘導体化を分離の前に行うのか、後に行うのか

ラノール基を除去することは難しいようです。塩によっても分離カラムの選別は変わってきます。

基性溶質としてポリアミンを分離する際のカラム

プレカラム誘導体化は、試料と直接に混合されの基材としては、ポリマーゲルが好まれている気ることから、反応効率が試料中の共存成分や溶媒がします。

の種類の影響を受けやすい、反応後の精製が煩雑- 13 -

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実験手技ノート

ポリアミン (2015) 2:12-14で回収率に影響する、などの欠点があります。その点、ポストカラム誘導体化法は、反応の自動化が可能で、試料調整が容易で、定量性、再現性に優れるという利点があり 5）、ポリアミンの分析に広く汎用されています。
本稿では、森屋先生、東先生に広く汎用されている「ポストカラム HPLC によるポリアミンの検出」について、ノウハウを紹介していただきます。お二人が本稿で用いているカラムや分離方法など表にまとめました。
参考文献
1.

中村洋 監修 「ちょっと詳しい液クロのコツ,
分離編」, 丸善出版 (2007)2.

中村洋 監修 ,「液クロを上手につかうコツ 誰も教え3.

Tabor, T., Tabor, CW., Methods in enzymology.

てくれないノウハウ」, 丸善出版 (2004)
Academic Press, 1983, 94 polyamines.
4.

ポリアミンとそのアセチル誘導体分析 Shodex テクニカルレポートより http://www.shodex.com/
ja/dc/04/04/06.html

5.

アミノ酸分析法 LCtalk53 号 より
http://www.an.shimadzu.co.jp/hplc/support/
lib/lctalk/53/53intro.htm- 14 -

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実験手技ノート

ポリアミン (2015) 2:15-18

HPLC によるポリアミン分析
森屋

利幸

共和化工株式会社環境微生物学研究所（東京都町田市忠生 2-15-5）
連絡先 森屋 利幸、e-mail: toshiyuki.moriya@kyowa-kako.co.jp
ポリアミンは分子中に複数のアミノ基を持つ

分析

ため、陽イオン交換カラムを用いた HPLC によ溶離液

る分析が可能です。しかし、ポリアミン分子にType1 溶離液

は、紫外吸収がありません。そのため、ポリアミ

クエン酸三カリウム一水和物

32.5 g

ンをカラムで分離した後に o- フタルアルデヒド

塩化カリウム

150 g（OPA）でラベルし、蛍光検出器を用いて検出し1.0 N 塩酸

65 ml

ます。このシステムでの分析は、

2- プロパノール

50 ml

30% Brij L23 solution

10 ml

水

1 リットル1, 比較的普及した HPLC に若干の変更を加えるだけで分析できること。
2, 前処理が簡便であること。

へメスアップ

3, 定量性が優れていること。
4, 発色剤を使用しないで運転することで分取

Type2 溶離液用にも使用できること。

クエン酸三カリウム一水和物

32.5 g

塩化カリウム126 g

1.0 N 塩酸

65 ml

2- プロパノール

50 ml

30% Brij L23 solution

10 ml

ミンの抽出から前処理、そして、分析の一連の操

水1 リットル

作を述べます。操作は、高度好熱菌のポリアミン

へメスアップ5, 高感度であり比較的少ない試料で分析ができること。
などの多くの利点があります。
以下に、著者らのグループで行っているポリアの分析を例にしています。なお、
この分析手法は、
Methods in Molecular Biology 720:81-111 に水は、
超純水またはイオン交換水を使用します。

も詳しく述べましたので、参照していただければ溶離液は使用前に 0.2 µm のフィルターで濾過と思います 1)。

します。量が多いので吸引濾過が便利ですが、濾
過前に Brij を添加すると、濾過中に激しく発泡

材料

することがあります。その場合には吸引強度を調ポリアミン抽出及び前処理

節してゆっくり吸引する必要があります。溶離液

15%（w/v）トリクロロ酢酸水溶液

は脱気してから使用することが望ましいですが、シリンジフィルター（DISMIC 25HP020AN（0.2

強く脱気し過ぎると 2- プロパノールが揮発してµm））

濃度が変化してしまい、溶出時間にズレが生じて- 15 -

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実験手技ノート

ポリアミン (2015) 2:15-18

機器の構成

しまうので、脱気の条件はできるだけ合わせたほうが再現性が良くなります。

図 1 に、機器の構成を示しました。No.1 ポン
プで溶離液を送液します。オートサンプラーで打発色試薬ち込まれた試料はカラムで分離されます。分離条
件を一定に保つため、カラムオーブンでカラムを水

968 ml55 C で保温しています。カラムで分離されたポo- フタルアルデヒド

1g

リアミンは、No.2 ポンプで送液される発色試薬

水酸化ナトリウム

16.0 gと混合され蛍光ラベルされます。この後、蛍光検

ホウ酸

24.7 g

出器で検出し記録します。

EtOH

10 ml

使 用 し て い る カ ラ ム は、GL-Sciences Inc.

2- メルカプトエタノール

2 ml（Tokyo, Japan） の も の で、 樹 脂 は MCIGEL

30% Brij L23 solution

20 ml

CK-10S（MITSUBISHI CHEMICAL、Tokyo,
Japan）（ベースポリマー : スチレン - ジビニル

溶離液と同様に、水は超純水またはイオン交換水を使用します。

ベンゼン共重合体、交換基 :RSO3-、平均粒径 11µm）を使用しています。平均粒径やカラムサイ

発色試薬はポリアミンの性質にかかわらず同一の組成のものです。

ズなどが異なりますが、同様のカラムが、東ソー株式会社から TSKgel Polyaminepak という商品

予め OPA 1 g に対して EtOH を 10 ml の溶液

名で販売されています。

を調整しておきます (4 C 保存 )。この溶液を 1リットルの発色試薬に対して 10 ml、2- メルカ

操作

プトエタノールを 2 ml を共に使用直前に加えまポリアミンの抽出す。

微生物は、盛んに分裂している対数増殖期と、分裂を停止している静止期では、細胞中のポリア

図1
分析システムの模式図。No.1 ポンプで溶離液を送液し、オートサンプラーから入った試料はカラムで分離後、No.2 ポ
ンプで送液される発色剤と混合し、蛍光ラベルされます。検出は蛍光検出器を用います。

- 16 -

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実験手技ノート

ポリアミン (2015) 2:15-18

ミン濃度が大きく異なります。概ね、対数増殖期

ため、アミノ酸を多く含む試料を分析すると、アのほうが 1000 倍程度多いと言われています。そミノ酸のピークと、Putrescine のピークが重なのため、特殊な事情を除き、対数増殖期で濁度をってしまうことがあります。また、Type2 溶離

合わせて集菌します。

液で、特殊ポリアミンを含む試料を測定すると、対数増殖期にある細胞は、高濃度のポリアミンを含むので、Thermus  thermophilus を試料とした分析終了までに長い時間がかかってしまい、最後のピークはブロードになってしまいます。

場合、概ね 30ml の培地で 660 nm の濁度が 0.5

Type1 溶離液から Type2 溶離液にグラジエン

程度の時に集菌した細胞で十分な分析ができまトをかけて分析すると、ピークがブロードになるす。

ことをある程度防ぐことができますが、送液ポン

培養液は、5000 x g、10 分程度の遠心で回収

プをもう一台用意する必要があリます。さらに、します。得られた細胞の湿重量 100 mg に対し一回の分析が終わる度にカラムを初期状態に平衡て、100 µl の 15%TCA 水 溶 液 を 加 え、 ボ ル テ

化する必要があるため大量の試料を分析する場合

クスミキサーでは激しく混和します。懸濁液は、には、時間がかかってしまいます。そこで、著者

最大回転数で、15 分間遠心し上清を得ます。上らは分析するポリアミンによりそれぞれ溶離液を清は、0.2 µm のシリンジフィルター（DISMIC

使い分けることにしています。

25HP020AN（ADVANTEC、Tokyo、Japan））
で濾過し、試料とします。

Type2 溶 離 液 で 標 準 ポ リ ア ミ ン を 分 析 す ると、概ね 25 分程度必要になります。分析後、カTCA を含む水溶液中でポリアミンは安定で、ラムを洗浄する必要が無いため、オートサンプ

長 期 間 の 保 存 が 可 能 で す。 分 析 感 度 は、100ラーを使用することで、一晩で 40 サンプル程度

pmol 程度のポリアミンがチャート中に収まるのを連続的に自動分析することができます。また、で、必要に応じて蒸留水で希釈して分析します。

Type1 溶離液を用いると、分岐ポリアミンであ

溶離液の選択る、Tetrakis（3-aminopropyl）ammonium の分

常 温 環 境 で 生 育 す る 微 生 物 や 動 物 な ど は、

析完了までおよそ 30 分必要になります。

Putrescine、Spermidine、Spermine の 3 種類のポリアミンを産生しますが、これに加えて、高度好熱菌は Tetrakis（3-aminopropyl）ammonium

分析条件
分析時の条件は以下のとおりです。

や Caldopentamine のような分岐型や長鎖型のNo.1 ポンプ送液速度

2 ml/min特殊ポリアミンを生産します。著者らは通常のポNo.2 ポンプ送液速度

0.5 ml/min

リアミンを分析する場合と、特殊ポリアミンを分

カラムオーブン温度

55 C

析する場合で、溶離液を使い分けており、長鎖・検出器励起波長

320 nm

分岐型ポリアミンを分析する際に使用する溶離検出器蛍光波長

450 nm

液を Type1 溶離液、一般的なポリアミンの分析に用いる溶離液を Type2 溶離液と称しています。
それぞれの溶離液の組成は上述のとおりです。

おわりに以上の手法は、ポリアミンの分析に関してですType1 溶離液を用いて、通常のポリアミンのが、同じシステムを用いて精製をすることも可能

分析も可能ですが溶出時間が早くなります。そのです。まず、通常の分析を行い、溶出時間を把握- 17 -

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実験手技ノート

ポリアミン (2015) 2:15-18

図2
高度好熱菌 Thermus thermophilus HB8 のポリアミン分析チャートの例。溶離液は Type2。a: Putrescine（4）, b:
Norspermidine（33）, c: Spermidine（34）, d: Thermine（333）, e: Spermine（343）/ Thermospermine（334）,
f: Caldopentamine（3333）, g: Homocaldopentamine（3334）, h: Tetrakis（3-aminopropyl）ammonium。

します。続いて、No.2 ポンプで送液する液を、うな試料である場合、イオン交換カラムを用いた発色試薬から超純水に置換し、同様の運転を行いHPLC 以外の分析手法を組み合わせる必要があります。検出器を見ながらフラクションを回収するます。

ことはできませんが、溶出時間に合わせて液を回溶離液は、非常に高濃度の塩化カリウムを含み収することでポリアミンの分取を行うことができます。高濃度の塩は金属を腐食させるので、ポンます。

プなどはイナート加工されたモデルを選択したほ

一般的に溶出の法則はある程度決まっており、うが望ましいです。また、分析終了後、そのまま

分子中のアミノ基（1、2、3、4 級の区別なく）放置すると流路中で塩が析出することがありますの数が少ないものから順次溶出します。一分子中

ので、超純水などで流路やカラムを置換する必要のアミノ基の数が同じ場合、炭素鎖が短い分子かがあります。

ら溶出します。更に、直線状ポリアミンのほうが謝辞

分岐ポリアミンよりも早く溶出します（図 2）。
Agmatine を Type1 溶 離 液 で 分 析 す る と、

本原稿を執筆するに当たり、大島泰郎先生から

Spermine と近い位置に溶出され分離しにくいで多くのご指導をいただきました。厚く御礼申し上

すが、Type2 溶離液ではそれぞれ完全に独立しげます。

たピークになるなど、標準ポリアミン以外のポリアミンが存在するときには、溶離液を変えて確認する必要があります。
Spermine（343） と Thermospermine（334）

参考文献
1.

O s h i m a T. , M o r i y a T. , a n d Te r u i Y.
Identification, chemical synthesis, andbiological functions of unusual polyamines

は Type1 溶離液、Type2 溶離液どちらを用いてproduced by extreme thermopiles.

も分離できません。Thermospermine を含むよMethods Mol. Biol. 2011. 720:81-111- 18 -

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ポリアミン (2015) 2:19-25

ポストカラム HPLC 法によるポリアミン分析
東恭平

千葉大学大学院薬学研究院病態分析化学研究室（260-8675 千葉県千葉市中央区亥鼻 1-8-1）
連絡先 東 恭平、e-mail: higase@faculty.chiba-u.jp【はじめに】

クロロ酢酸（TCA）を添加する（最終濃ポリアミンは分子中に複数個のアミノ基を有するため、ポリアミン分析では陽イオン交換カラムによる分離と、蛍光誘導体化による高感度検出が度 5%）。
4.   70℃で 30 分ほど過熱した後、4℃で 30分ほど静置する。

可能です 1)。このポストカラム HPLC 法では、試5.   10,000 g で 10 分間遠心後、上清をバイ

料調製が簡便で、定量性、再現性に優れているこ

アル瓶に移し分析に用いる。ペレットはとから、細胞内ポリアミンの主成分であるプトレ

0.1N の NaOH に溶解し Lowry 法などのッシン（PUT）、スペルミジン（SPD）およびス

蛋白質定量に用いる。

ペルミン（SPM）を測定する他、ポリアミン生
合成系・分解系酵素の活性を調べる際にも適して

酵素反応液、細胞抽出液および組織抽出液といます。ポリアミン分析では、一般的にポンプ 2

いった液体サンプルの場合は、最終濃度が 5% に台、カラムオーブン 1 台、蛍光検出器 1 台、オなるように TCA を添加し、4 のステップから始ートサンプラー（又はマニュアルインジェクター）めます。酵母など硬い細胞壁を有するサンプルの1 台を必要としますが、私達の研究室では安価な場合は、ステップ 5 の遠心後に得られたペレッ

機器で代用できないか検討して参りました。以下

トを更に TCA 処理を行うとポリアミンの回収率に私達の研究室でのポリアミン抽出法、および分が良くなることがあります。遠心後に得た上清に析の一連の操作を述べたいと思います。操作は主浮遊物が存在する場合は、0.22 µm のシリンジとして大腸菌、酵母および動物細胞の分析を例にフィルターで濾過する必要があります。ポリアミ

しています。

ン の 標 準 品 (PUT、SPD、SPM 等 ) は、5%TCA
で調製します。3 種のポリアミン（100 µM）が【実験手法】

含まれた溶液を用事調製で 5 µM に希釈した後、
オートサンプラーを用いて 20 µL (100 pmol) を¾ サンプル調製（図 1A）

HPLC に供します。

1.   マイクロチューブ中に大腸菌、酵母又は動物細胞を回収する。

¾ HPLC 条件

2.   細胞を 1 mL のリン酸緩衝液（PBS）で 2
回以上洗浄する。

溶 離 液 及 び 反 応 液 の 組 成 は、 ポ リ ア ミ ン
分 析 用 カ ラ ム（ 東 ソ ー 株 式 会 社 , TSKgel

3.   細胞のペレットを少量（50 ~ 100 µL）のPolyaminepak）の説明書にほぼ準じます。

滅菌水を用いて懸濁し、等量の 10% トリ- 19 -

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ポリアミン (2015) 2:19-25

9 強く脱気しすぎるとメタノールが揮発してし溶離液→溶離液 1L の調製方法

まうので、脱気のしすぎには気を付けて下溶離液（pH 5.3）の調製方法は以下の通りです。

さい 。真空ポンプの吸引力にもよりますが、

塩化ナトリウム 117.0 g（2.0 mol/L）、クエン酸

私達の研究室では約 2 分が目安です。

三ナトリウム二水和物 27.44 g（93.6 mmol/L）、

9 各ポリアミンの溶出時間は pH によって影響35% 塩酸 5.25 mL（0.23%）、n- カプロン酸（ヘをうけるので、pH 調整は正確に行います。

キサン酸）0.08 mL（0.01%）、25% Brij-35 3.2

9 脱気は溶離液のボトルに回転子を入れ、マグ

mL（0.1%）、メタノール 200 mL（20%）/L

ネチックスターラーで回しながら真空ポンプ（ ）内は最終濃度。上記の試薬に DDW を 800で減圧にしても可能です。

mL ほど入れた後、水酸化ナトリウムを用いてpH を調整する。次に DDW で 1L にまでメスア

反応液（OPA）

ップした後、濾過膜 (CORNING 150 mL Bottle

反応液（OPA）の組成は以下の通りです。

Top Filter, 0.22 µm cellulose acetate) を用いてホウ酸 24.53 g（0.4 M）、水酸化カリウム 19.84

吸引濾過を行う。最後に、超音波洗浄機に溶離液g（0.35 M）、2.98 mL 25% Briji-35（0.1%）、の入ったボトルごと入れ、ソニケーションを行う`- メルカプトエタノール 2 mL（0.2%）、o- フタと同時に真空ポンプで吸引し、脱気を行う。

ルアルデヒド（OPA）0.56g（4.18 mM）、メタ
ノール 6.25 mL（0.625%）/L （→注意点）内は最終濃度。

9 本 HPLC 法 に お け る 溶 離 液 の 流 速 は 0.42
mL/min です。1 回の測定に 35 分かかるの→反応液（OPA）1L の調製方法

で、1 サンプルあたり 14.7 mL の溶離液を1.

ホウ酸 24.53 g、水酸化カリウム 19.84 g を必要とします。更に測定前に行う LC 流路のメスシリンダーに入れた後、DDW を約 900

液置換、およびベースラインの安定化にも溶mL 注 い で 完 全 に 溶 解 さ せ、 最 後 に 25%離液を必要とします。また、オートサンプラ

Briji-35 を 2.98 mL 添加してホウ酸溶液とーを用いて O/N で測定することも多いので、する。

私達は通常、必要量（14.7 mL サンプル数）

2.

15 mL 遠沈管に OPA 0.56 g を入れ、メタの 1.5 倍量の溶離液を調製しています。

ノール 6.25 mL と `- メルカプトエタノール

9 試薬は可能な限り、HPLC 用グレードを用い

2 mL を添加して完全に溶解させて OPA 溶てください。

液とする。

9 n- カプロン酸は臭いがきついので、ドラフ

3.

ト内で溶離液に添加して下さい。

ホウ酸溶液に OPA 溶液を添加した後、1L ま
で DDW でメスアップして調製した溶液を反9 1L を調製する際、pH 調整前に水酸化ナト
リウムを 5 粒ほど先に溶離液に入れておく

応液（OPA）とする。
4.

と pH 調整が楽です。

濾 過 膜 (CORNING 150 mL Bottle Top
Filter, 0.22 µm cellulose acetate) を用いて

9 Brij-35 は泡立つので pH 調整前に添加して下さい。

吸引濾過を行う。
5.

- 20 -

最後に、超音波洗浄機に溶離液の入ったボト
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ポリアミン (2015) 2:19-25

ルごと入れ、ソニケーションを行うと同時にアルミホイルで遮光して下さい。

真空ポンプで吸引し、脱気を行う。
HPLC 装置→注意点

当研究室で用いている HPLC 装置一式［ポン9 本 HPLC 法 に お け る 反 応 液 の 流 速 は 0.42

プ 1（溶離液用）、ポンプ 2（反応液用）、恒温水

mL/min です。1 回の測定に 35 分かかるの槽、蛍光検出器、PC（システムコントローラ）、

で、1 サンプルあたり 14.7 mL の反応液を陽イオン交換カラム（東ソー株式会社 , TSKgel

必要とします。更に測定前に行う LC 流路のPolyaminepak）］を示します（図 1B）。

液置換、およびベースラインの安定化にも反一般的なポストカラム HPLC 法は、反応試薬

応液を必要とします。また、オートサンプラを送るためのポンプシステム（ポンプ 2）、反応

ーを用いて O/N で測定することも多いので、

コイル（50 cm~10 m 程度）及び反応炉を必要

私達は通常、必要量（14.7 mL サンプル数）とするため装置が複雑化しますが、ポリアミン分の 1.5 倍量の反応液を調製しています。

析では OPA とポリアミンの反応が良く、至って9 Brij-35 は泡立つので、ホウ酸溶液を調製す

シンプルに測定できます。

る際はホウ酸と水酸化カリウムを DDW で完全に溶解させてから添加して下さい。

9 溶離液用ポンプ（ポンプ 1）

9 脱気は反応液のボトルに回転子を入れ、マグ本プロトコールでは、目的のポリアミン（PUT、ネチックスターラーで回しながら真空ポンプ

SPD、SPM） の 分 離 を TDK gel polyaminepak

で減圧にしても可能です。

の説明書に記載通り、アイソクラティック溶出で

9 反応液は遮光瓶に入れるか、又は透明な瓶をできますので、移動相のポンプは 1 台ですみます。

図１ サンプルの調製方法と分析システムの模式図（A）サンプルに最終濃度が 5% になるように TCA を添加し懸濁させます。サンプルを 70℃で加熱した後、4℃で冷やします。最後に遠心を行って得られた上清を HPLC に供します。（B）ポンプ 1 で溶離液を送液し、オートサンプラーから入ったサンプルはカラムで分離後、ポンプ 2 から送液された発色液 (OPA) により蛍光誘導体化をうけます。検出は蛍光検出器を用います。

- 21 -

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ポリアミン (2015) 2:19-25

ポンプにグラジエントユニット（二つ以上の溶離処理装置ソフト「Chromat-PRO」をインストー

液を混合する装置）のオプションは必要としませルし、クロマトグラムのデータ処理に使っていまん。また、有機溶媒は気化しやすい、脱気直後かす。この Chromat-PRO は操作が簡単で、マニら空気の再溶存がはじまる、などの留意は必要でュアルおよびオートサンプラーを用いたデータをすが、減圧や超音波を用いた溶離液の脱気を直前それぞれ取得できます。利点は PC インテグレーに行えば、デガッサー（脱気装置）を用いなくてターに比べ価格は約 1/5 であること、どの機器も大きな実害を感じません。酸・塩基・高濃度のメーカーの検出器とも接続可能で、一度に最大 2

塩化ナトリウム水溶液に耐性のイナート送液ユニ

つの（蛍光／ UV）検出器から同時にデータを取ットが望ましいですが、通常のステンレススチー

得することが可能です。

ルでも測定できます。

9 オートサンプラー

9 反応液用ポンプ（ポンプ 2）

サンプル数が少ないのであれば、マニュアルイン

無脈流プランジャーポンプ（日本精密科学株

ジェクターでも良いです。

式会社 , NP-FX（II）-1U）が送液ユニットの代用機器として用いることができます。 一番の利

上記の代替機器で HPLC を組むと、オートサ

点は、新品の HPLC ポンプに比べ約 1/4 以下のンプラーを手動で操作して連続分析を行う形にな値段であること、ボタンはポンプ ON/OFF の一りますが、ポンプ 1 と蛍光検出器以外の設備費つしかなく、操作が簡便であることです。

を大幅に削減することができます。

9 恒温水槽
サンプル調製時に用いる湯浴の中にカラムをHPLC 流路の洗浄

沈めてカラムオーブンの代用とします。利点は、測定が終了したら以下の通り流路の洗浄を行

カラムオーブンに比べ約 1/10 安いことです。

います。

9 PC インテグレーター

1.

HPLC のポンプを止める。

2.

カラムを外し、カラムの代わりにピークタフ

当研究室では、スタンドアローンのノート PC（Windoiws 7 以上）にクロマトグラム用データ

ユニオンを接続する。

ࣉࢺࣞࢵࢩࣥ
࢝ࢲ࣋ࣜࣥࢫ࣑࣌ࣝࢪࣥ

+ 3 /& ᮲௳

ࢫ࣑࣌ࣝࣥ

P9









࣒࢝ࣛ: TSKgel Polyaminepak(ᮾࢯ࣮ᰴᘧ఍♫, 4.6 mm i.d. x 50 mm)
࣒࢝ࣛ ᗘ: 60ºC⁐㞳ᾮὶ㏿ (࣏ࣥࣉ1): 0.42 mL/min
ヨ⸆ᾮὶ㏿ (࣏ࣥࣉ2): 0.42 mL/min᳨ฟ: ບ㉳Ἴ㛗 340 nm, ⺯ගἼ㛗 455 nm
















7LPH PLQ

図２ ポリアミン標準品のクロマトグラム- 22 -

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ポリアミン (2015) 2:19-25+
ortophtalaldehyde

図３ OPA によるポリアミンの蛍光標識

3.

+β-mercaptoethanol

polyamines

fluorescent substances(Ex: 340, Em: 455)

（カラムは溶離液を満たしたままキャップし

OPA がポリアミンのアミンと反応するためて保管します。
）には、塩基性条件下で `- メルカプトエタノ

インレットチューブを溶離液から脱気水にールが必要です（図 3）。

移す。ドレインバルブを左に 1 回転させて 52.

ポンプが正常に稼働しているか確認します。

分ほどパージする。パージした後、ドレイン

ポンプ 1 はドレインバルブを左に一回転させバルブを閉めて、流速 0.42mL/min の脱気て、1 分間あたりの廃液量をエッペンドルフ

水で流路を夜通し洗浄する。

チューブを用いて測定します。ポンプ 2 は溶離液と混合する場である三方活栓（ピーク¾ ポリアミン測定タフティ）に接続した反応液ラインのピーク

種々のポリアミン各 100 pmol のクロマトグ

タフコネクターから測定します。正常であれ

ラムを図 2 に示 し ま す。pH5.3 の 溶 離 液 で は、ば（流速を 0.42 mL/min にする必要はあり

PUT は 6.7 分、 カ ダ ベ リ ン（CAD） は 9.5 分、ません、1 mL/min でも良いです）、ポンプ

SPD は 12.5 分、及び SPM は 24.6 分で検出でき

1 および 2 からそれぞれ 1 分間あたり 0.42

ます。各ポリアミンの検量線は 10 pmol 〜 2500

mL の溶液を回収できます。回収できなかっpmol の範囲で直線となります。サンプル中に含た場合は、基本的にポンプヘッド内のプラン

まれるアミノ酸はほぼ 5 分以内に溶出するため、ジャーシールが摩耗している可能性が高いでポリアミンを正確に定量することができます。オす。その際はポンプの説明書を読み、新品のートサンプラーで TCA 抽出液 20 µL を HPLC に

プランジャーシールに交換しましょう。

供し、それぞれのピーク面積からモル数を求めます。

9 ベースラインが安定しない。

更に Lowry 法で求めた 20 µL 分の蛋白質量をベースラインが安定しない原因は機器の不良用いて補正すれば、サンプル中に含まれるポリアや試薬調製の不備など多く挙げられます。ドリフ

ミン量を nmol/mg protein の単位で決定できまトが起きた場合は、検出器の汚染、カラムの劣化す。

が考えられ、スパイクが起きた時はシグナルケー
ブル・電気ケーブルの不良が考えられます。その→トラブルシューティング

際はカスタマーセンターに相談しながら対応した

9 ポリアミンのピークを検出できない。

方が無難です。

1.

反応液を正確に調製したか確認しましょう。
- 23 -

下記では、ベースラインに脈流が生じた場合の日本ポリアミン学会

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ポリアミン (2015) 2:19-25

原因特定とその対処法を簡単に述べます。

ください。

脈流が生じる原因として、溶離液調製の不備、2.

カラム無しで圧力が高い場合は、オートサン

カラム等の連結部位に気泡が留まっている、又はプラーのニードルの詰まりを疑います。ニー

プランジャーシールの摩耗が考えられます。

ドルが詰まった場合、ポンプに負担をかける

調べ方として、ことを承知で溶離液を用いて押し出したり、

1.

カラムを接続した条件で、ポンプ 1 又は 2

超音波で取り除くことを試しますが、経験上を個別に動かします。どちらかのポンプで脈ほとんど好転しません。水酸化ナトリウムで流が起きたら、プランジャーシールの摩耗を洗浄する方法も考えられますが、ポンプヘッ

疑います。プランジャーシールの場合は、説ドのプランジャーがガラスである場合は、急明書を見ながら交換して下さい。

激に痛む可能性があります。従って、上述のポンプ 1、2 共に脈流が認められた場合、検通りサンプル調製とセプタムに注意を払った

出器のセルに気泡がないか確認します。気泡ほうが良いと思います。

2.

が確認された場合、カラムを外して溶離液の流速を上げる、又は検出器を脱気水で入念に→本ポリアミン分析における課題

置換した後、2- プロパノールで洗浄すると取れます。検出器の出口を加圧して気泡を抜

3.

1.

血漿サンプルや動物細胞培養用の培地には遊く操作もありますが、やりすぎるとセルが痛

離アミノ酸が多く含まれており、プトレッシ

む可能性があります。

ンピークがアミノ酸ピークと重なって検出で蛍光検出器のランプの寿命が近づくとベース

きない。

ラインが安定しないことがあります。ランプ4.

私達の分析法では以下の問題点があります。

2.

トリプトファン（Trp）とカダベリンの溶出が寿命を迎えていた場合は、新品に交換しま

時間がほとんど同じである。従って、血漿サす。

ンプルで微量の CAD ピークを検出した際は最後に溶離液の脱気がきちんと行われていた

Trp の可能性が高い。標準品 CAD のピーク

かノートで確認します。

は比較的シャープであるのに対し、Trp のピークはブロードである。

9 ポンプの圧力が高い。

3.

ポンプの圧力が高いまま測定を続けると、カラチン（AGM）は SPM と部分的にピークが重ムおよびポンプが痛みます。
1.

カダベリンはヒスタミン（His）と、アグマなるので注意する。

カラムを接続した際に圧力が急激に高くなる

4.

N1- アセチルスペルミジン（N1-AcSPD）は

場合は、カラムを新品に交換して下さい。カ

PUT より早く溶出するため、アミノ酸とピラムを逆向きに付けて詰まりを除く、又はカークが重なり検出が難しい。N1- アセチルス

ラムを指定された溶液で洗浄することもあり

ペルミン（N1-AcSPM）は PUT とピークがますが、経験上ほとんど好転しません。サン

部分的に重なる。

プル調製時にシリンジフィルターで不溶物を従って、血漿サンプル中のポリアミン定量を取り除くこと、バイアル瓶の蓋として用いる

行う場合は、カラム二つを直列につなげて溶離液

セプタムを使い回ししないこと等を心掛けて及び反応液の流速を共に 0.21 mL/min に設定し- 24 -

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実験手技ノート

ポリアミン (2015) 2:19-25

ます。標準品では、N1-AcSPD（15.0 分）、PUT（23.0 分）、N1-AcSPM（26.1 分）、
CAD（32.7 分）、
His（36.0 分）、SPD（43.7 分）、AGM（78.9 分）
及び SPM（89.6 分）にそれぞれ検出できます。
血漿サンプルでは、N1-AcSPD のピークがアミノ酸ピークと重なって検出できないことが多いですが、大腸菌に含まれる N1-AcSPD は比較的検出可能です。
謝辞
本原稿を執筆するにあたり、戸井田敏彦先生、
植村武史先生に多くのご指導をいただきました。
深く御礼申し上げます。
参考文献
1.

Igarashi K, Kashiwagi K, Hamasaki H, Miura
A, Kakegawa T, Hirose S, & Matsuzaki S.:
Formation of a compensatory polyamineby Esherichia coli polyamine-requiringmutants during growth in the absence ofpolyamines. J. Bacteriol. 166: 128-134（1986）〜 コラム 〜

HPLC 解析中の溶離液や反応液のつぎ足し？

溶離液の mess up の水の量が 5ml 違うだけでも、塩の量がわずかに異なっても、pH がわずかにずれていても、脱気による有機溶媒の揮発で成分構成が異なっても、いずれも保持時間に影響します。溶離液をつぎ足した場合はカラムの再平衡化が必要です。つぎたした反応液中の OPA の劣化やロットの違い、また反応液の温度の違いは、ピークの検出感度に影響します。
溶離液や反応液をつぎ足したら、必要に応じてカラムを再平衡化し、標準物質も再測定しましょう。

- 25 -

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ポリアミン (2015) 2:26-27〜 編集部より筆者への質問コーナー 〜
Ｑ１．試薬取扱い上の注意、廃液の際の注意などありますか？
森屋：取り立てて危ない試薬は使っていませんが、毒物指定されてしまったメルカプトエタノールを使いますので、廃液は自治体の指示に従って破棄する事が必要になります。
東：廃液ですが、大学の廃液処理の規定に従い、廃棄します。試薬の取り扱い上の注意は、本文の注
意点に書きました。
編集部：使用する化学物質に関する情報は、SDS（safety data sheet）等より入手できます。万が一に備え誰もがすぐに閲覧できるよう、SDS 等の化学物質情報はプリントし、ファイルとして保管する習慣をつけましょう。
Ｑ２．ピークが割れたときの対処は？
森屋：原因は複数考えられるので、まずは 2 mol/l KOH 水溶液を流してカラムを洗浄して様子を見ます。これでも改善されない場合には、カラムやラインフィルターと配管の接続部を一度取り外し、付け直して様子を見ます。配管が抜け気味でデッドボリュームができていると、ピーク割れが起きやすくなるそうです。古いカラムの場合には、樹脂が偏ってデッドボリュームができるそうですが、この場合には対応できないので、新しいカラムと交換します。
東：説明書の記載通り、新品カラムに交換します。カラム入口側に充填剤の補充はしません。
Ｑ３．圧があがってきたときの対処
森屋：ほとんどの場合、ラインフィルターに汚れが詰まっている事が原因で、ラインフィルターの交換で対応しています。ラインフィルターは超音波洗浄器で洗浄することで、数回は再生・再使用することができるようです。
東：説明書の記載通り、ラインフィルターかエンドフィッテングを交換するとありますが、現在は行っていません。新品カラムに交換しています。
Ｑ４．カラムの寿命はどれくらい？
森屋：使用頻度にもよりますが、3 年から 5 年程度かと思われます。分離能が低下して実用に耐えなくなったり、カラムが原因で圧力が上昇し、対処できない場合には交換しています。
東：カラムのロットによります。1000 サンプル測定できたら素晴らしいです。
Ｑ５．カビ、菌類対策
森屋：現状、カビや菌類で汚染されたという経験はありません。分析終了後は超純水で置換することと、頻繁に使用することで、それらの繁殖を抑えられているのかもしれません。
東：特別なことはしていません。
編集部：今回の溶離液にはでてきませんでしたが、リン酸緩衝など菌の繁殖しやすい溶離液の場合ア- 26 -

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実験手技ノート

ポリアミン (2015) 2:26-27

ジ化 Na を添加することがあります。
Ｑ６．他に寿命を長持ちさせるために工夫していること
森屋：基本的なことですが、○空気を入れない、○使用後に超純水で置換して塩の析出を防ぐ、○運転中の圧力を確認し、必要以上に高い圧力で運転しない、などです。
東：ガードカラムを付けたら良いかと思いますが、付けていません。各ポリアミンのピークがブロードしたら即新品に交換しています。

〜 HPLC の原理をもっと勉強したい人のために〜＜書籍＞
日本分析化学関東支部編 ,「高速液体クロマトグラフィーハンドブック 改訂 2 版」, 丸善出版
(2000)
松下至 , 石井考昭 ,「これならわかる液体クロマトグラフィー

その仕組みと使い方」, 化学同人

(2011)
中村洋 監修 ,「液クロを上手につかうコツ 誰も教えてくれないノウハウ」, 丸善出版 (2004)
中村洋 監修 ,「ちょっと詳しい液クロのコツ」前処理編 , 検出編 , 分離編 , 丸善出版 (2006, 2006,
2007)
日本分析化学会 編 中村洋監修 ,「誰にも聞けなかった HPLC Q&A 」虎の巻 , 龍の巻 , 彪の巻 , 犬の巻 , 武の巻 , 筑波出版会（2001, 2002, 2003, 2004, 2005）＜ web ＞
ジーエルサイエンス 技術情報 http://www.gls.co.jp/technique/index.html
島津 日常分析の留意点 http://www.an.shimadzu.co.jp/support/support.htm
Shodex HPLC 入門講座 http://www.shodex.com/ja/kouza/
資生堂 テクニカルノート http://hplc.shiseido.co.jp/note/index.html
化学物質評価研究機構 技術資料
http://www.cerij.or.jp/service/09̲chromatography/column̲user̲support̲01.html
東京化成 Chromato Mail
http://www.tcichemicals.com/ja/jp/product/chromatography/chromatomail/index.html- 27 -

日本ポリアミン学会

The Japanese Society of Polyamine Research

学会レビュー

ポリアミン (2015) 2:28-29

The Third International Conference on Polyamines: Biochemical,
Physiological and Clinical Perspectives への参加報告（なお、この学会のホームページの URL は、
http://www.fcfar.unesp.br/polyamines2014brazil/ です）

早田邦康

自治医科大学さいたま医療センター
The Third International Conference on Polyamines は、ブラジルのサンパウロから東に車で約
３時間３０分の場所にある Itamambuca Eco Resort（Ubatuba-SP）において２０１４年８月３１日
から９月５日まで開催されました。日本からは地球の反対側、ヨーロッパからも遠い地での開催ということもあり、参加者が少なかったのが残念でした。会場は、温帯雨林（正確な表現かどうかは判りません）の中に建てられたリゾート地で、森林に囲まれ、多くの鳥、リス、カエル、昆虫が生息するところでした。また、少し歩くと、広大なアーチ状の素晴らしいビーチが付属したリゾートです。私たちも会議の合間にこのビーチでのんびり過ごしましたが、海がきれいで最高にくつろげました。このような会がなければ一生知ることができないような場所で学会を開催してくれたエンツォ先生や学会会長のサンドロさんに感謝いたします。
せっかくブラジルまで行ったので、少しだけ観光にも行ってきましたが、そこでの感想です。日本
人と比較してブラジル人は話好きの人がとっても多いようです。たとえば、タクシーに乗ると３０分ぐらいの距離だと延々としゃべっています。と思っていたら、ブラジルに生息する動物や鳥も自己主
張が強いようです。たとえば、食事をしていた時に地面に食べ物の屑がこぼれたときには、どこからともなく鳥がやってきて、とっても “ うるさく ” 鳴き出します。こちらが立ち退かざるを得ないぐら
いの大きな声で。あまりにも “ うるさい ” ので、こぼれていた食べ物の屑を投げて渡すと、すぐに食べて、そのあとはとっても静かに小枝に止まっていました。また、かわいい顔のハナグマというアラ
イグマに似た動物がいるのですが、食べ物が入った袋を持っていた若い男性が、中から食べ物を動物に与えた途端、どこからともなく数十匹の大群が現れ、男性の持っている袋にとびかかり、走って逃げようとした男性から袋を奪い取り、瞬く間に食べつくしました。見ていて恐怖さえ感じさせるような光景でした。自然環境が人間にも動物にも影響を与えるのでしょうか？それともたまたまなのでしょうか？
学会の帰りに立ち寄ったサンパウロの町は基本的に車で移動するような街並みで、歩いてぶらぶらできる地域はほとんどありません。サンパウロでもやはり日本人は窃盗のターゲットになっているそうです。現地に住んでいる知り合い曰く、「信号では赤でも立ち止まらず、横断したほうが安全です。」「地下鉄は、現地に溶け込めば大丈夫ですが、日本人が旅行者の雰囲気を漂わせて乗っていると、まずターゲットになります。
」とのことでした。ちなみに、サンパウロの街中を少しだけ歩いたのですが、何と若い奴が警察に捕まるところに遭遇しました。もし行く機会があれば、ご注意を！
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学会レビュー

ポリアミン (2015) 2:28-29

さて、今回学会参加で最も感動したのは、何と言っても最終前日の夜に開催されたサンバ・パーティ。
南米独特の、はじけるようなリズム感。私はかつてロックバンドのドラマー（もちろんド素人）でした。しかし、加齢とともに日本人の遺伝子に刷り込まれた演歌のリズムが優勢になってきており、な
かなかロックのリズムや、
ましてやサンバのリズムに “ のる ” ことができなくなっています。それでも、参加者全員が打楽器をもって、リズムを取りながら踊ったのは大変楽しい思い出になりました。そして、サンバダンス！！！！身長１ｍ８０ｃｍ以上の女性が、テレビでよく見るサンバの衣装を着て目の前でダンスを披露してくれました。その迫力！すごいーーーーーー！！！女性の身にほとんど布がかかっておらず、おしり（大半の場合には偽造だという情報もありますが）がほとんどむき出しなのに、“ 性的いやらしさ ”（言葉は適切ではないかもしれませんが、もっとも表現として正しい）を微
塵も感じることがない。直観的な印象としては、野生のきれいな動物が跳ね回っているという表現が最も適切な印象です（踊っていた女性には大変失礼な表現かも知れませんが・・・）。彼女たちの全身から湧き出るはじける躍動感には感動さえ覚えました。
彼女らが見せてくれた躍動感とリズム感は、
日本人がどんなに頑張っても、たぶん真似することができない天然の要素が入ったものではないかと思わされました（日本の各地で頑張っている日本人サンバダンサーの方々、ごめんなさい）。
観光と遊びの話だけで最後まで終ろうと思ったのですが、叱られそうなので、少しだけ学術的な話
題にふれます。講演の discussion の途中で何度か初日の講演の話が出てきました。私は直接講演を聞いたわけではなく、人から間接的に聞いた話なのですが、その講演の中ではこれまでのポリアミン
研究に対する辛辣なコメントがあったようです。我々ポリアミン研究者は、ポリアミンとその阻害剤などを用いた研究結果が臨床においてどのような地位を確立できるのかということに関して答える義務があります。たとえばピロリ菌の除菌はかなりの確率で成功するようになっています。もし、その方法が確立されておらず、癌化の機序を考えた場合には、ポリアミン欠乏食やポリアミン合成阻害剤
は治療法の一つとして可能性があると思われます。ところが、現在ピロリ菌の除菌療法がほぼ確立されています。よって、ピロリ菌感染によって誘発される疾患の予防には、ピロリ菌除菌が最も優先される治療であり、ピロリ菌が存在することを前提とした上での除菌以外の対処方法を優先する臨床医はほとんどいないと思います。同様に、発癌予防や癌進行抑制のためにポリアミン合成阻害やポリア
ミンアップテイク阻害剤を用いた治療を考えた場合、副作用と治療効果のバランスにおいて、患者さんや治療する医師のコンセンサスを得るまでには多くの高いハードルがあるようにも思えます。さらに、手前味噌の話で申し訳ありませんが、ポリアミン欠乏状態は遺伝子の異常メチル化を誘発します。
遺伝子の異常メチル化は癌を含む生活習慣病の重要な原因であり、ポリアミン合成阻害やトランスポート阻害によって重大な遺伝子修飾異常を誘発しないか、などの多くの問題を解決する必要があるよ
うに改めて考えさせられた会議でした。自分で問題提起しましたが、若い研究者の方々による研究の発展を祈っています。何といっても日本のポリアミン研究者の数は他の国と比較しても多く、活発な活動が続いています。これは大変喜ばしいことです。ますます、多くの若い研究者がポリアミンの多彩な生物活性に虜にされることを祈っています。
以上、きわめてバイアスのかかった学術関連の話もしてしまいましたが、「“ サンバ ” ボケ爺」のたわごとと聞き流していただければ幸いです。
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学会レビュー

ポリアミン (2015) 2:30

日本分子生物学会に参加して草薙大輔

千葉工業大学大学院工学研究科生命環境科学専攻

修士２年

私は学部生のときから卒業研究としてポリアミン研究に携わり、大学院進学後も引き継いて、プ
トレッシンを栄養源として利用する Puu 代謝経路の酵素群をコードする遺伝子クラスターの下流に存在する機能未知遺伝子の、Puu 代謝経路への関わりについて研究してきました。研究活動を日々、続けることで得られた研究成果を、第 37 回日本分子生物学会においてポスター発表しました。今回初めて大きな学会に参加しましたが、ポスター発表の会場については、入ってすぐ企業の新製品の紹介が目に飛び込み、想像していた以上に、ポスター発表よりもメインのように感じました。会場では、大腸菌における機能未知蛋白質の機能解析など、私の研究分野に近い研究をしている研究者や、他分野の研究者の間で、大腸菌の培養条件や目的の機能未知遺伝子のさらに下流にはどのような遺伝子が存在するかなど、様々な意見を交換しました。学会に参加することで、他の研究者の研究を知ることだけでなく、自分の研究に活かせる新しいアイデアや意見があり、非常に刺激を受けました。
今まで私は、自分の研究成果を何らかの形で発表することは重要だと分かっていましたが、発表を積極的にしようという気にはなりませんでした。しかし、今回の学会参加で様々なアイデアと意見を頂き、非常に刺激を受けましたので、さらに研究活動に励み、データが揃ったら再び学会で発表し、さらに多くの人からの意見を貰いたいと思えるようになりました。

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年会報告

第 6 回年会総括
年会世話人

石田 真巳

東京海洋大学大学院海洋環境学部門
日本ポリアミン学会第 6 回年会は、平成 27 年 1 月 19 日（月）・20 日（火）の二日間にわたり、
東京都港区の東京海洋大学品川キャンパス ･ 楽水会館で開催された。事前登録者６５名、当日参加者
１１名、東京海洋大学参加者８名、延べ８４名の参加により、活発な発表 ･ 討論がおこなわれた。
特別講演は、19 日の夕方、以下のように講演者を招いて 1 時間おこなわれた。
講演者

里見 正隆（( 独 ) 水産総合研究センター ･ 中央水産研究所）

演題 『水産食品におけるヒスタミン研究の最前線』
特別講演の内容を簡単に紹介する。ヒスタミン蓄積が食中毒等の問題になりやすい水産食品を主な研究対象として、ヒスタミン蓄積と鮮度の関係、ヒスタミン蓄積の抑制、ヒスタミンに対する基準値、
サンプリングの問題点等について、食品業界や国際的指導機関の情報等も交えて講演して頂いた。一般講演（15 分）は、19 日に 10 演題、20 日に 14 演題、計 24 演題が発表された。
『微生物とポリア
ミン（1）、（2）』『ポリアミンと植物』、『ポリアミンと核酸・細胞』、『ポリアミンと食 ･ 健康』および『ポ、リアミンと医療応用』のセッションに関連演題を集めて発表を行い、活発な討論が行われた。年会の開催日程が大学入試センター試験の翌日というタイトなスケジュールであったにもかかわらず、多数の大学関係者を含む参加、発表があった。また、食品や健康関係の会社からの参加者も１３名と多かった。基礎研究から産業までポリアミン研究に対する幅広い関心の高さが感じられた。
懇親会は、19 日の晩に東京海洋大学 ･ 大学会館 ･ 生協食堂ホールで開催され、６４名の参加により有意義な意見交換会を行うことができた。
なお、本年会に対し、株式会社高長様から年会抄録集への広告掲載によるご支援を賜り、また、協同乳業株式会社様からは乳製品のご提供を賜り、年会を盛大にすることができた。ここに記して感謝の意を表する。

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年会報告

日本ポリアミン学会

第６回評議員会議事録

日時 : 平成 27 年 1 月 20 日（金）11:50 〜 13:00
会場 : 東京海洋大学

品川キャンパス3 号館 3 階「第 3 ゼミナール室」

出席者：五十嵐一衛、大島泰郎、大澤仲昭、岡孝己、柏木敬子、河合剛太、川喜田正夫、草野友延、

早田邦康、松藤千弥、鈴木秀之、村井法之
1. 役員人事
1) 第 8 回年会担当役員に千葉工業大学河合剛太氏および根本直樹氏の両氏を選出した。
2) 第 9 回年会担当役員に関西学院大学藤原伸介氏を選出した。
2. 事務局より以下の事業報告がなされた。
1) 会員数・会費納入状況
2) 学会誌ポリアミン Vol.1 No.1 (2014 年 4 月 ) および No.2 (2014 年 10 月 ) を発行した。
3. 以下の事業計画が提案され承認された。
1) 第 7 回年会（京都）年会担当役員：鈴木秀之（京都工芸繊維大学）
2) 第 8 回年会（千葉）年会担当役員：河合剛太・根本直樹（千葉工業大学）
3) 学会誌「ポリアミン」の発行（２回 / 年を予定）
4) 若手海外渡航補助（2015 年

ゴードン会議＆セミナ＝発表者に対して６名程度）

5) トランスグルタミナーゼ・ポリアミン合同学術集会開催
6) 第 88 回日本生化学会大会 ( 分子生物学会との合同開催、神戸 )平成 27 年 12 月 1 日（火）〜 12 月 4 日（金）＊ワークショップ企画応募予定（オーガナイザー：慈恵医大・村井法之、協同乳業・松本光晴）
4. 事務局より平成 25 年度決算および監査が報告され承認された。
5. 事務局より平成 26 年度収支状況について報告があった。
6. 事務局より平成 27 年度予算の報告があり承認された。
7. 事務局より 2015 年開催予定の国際学会について連絡があった。
・Gordon Research conference 2015 Meeting Polyamines“Polyamines and Their Metabolic Regulation in Biology and Disease”
会期：2015 年 6 月 14 日 ( 日 ) 〜 19 日 ( 金 )- 32 -

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年会報告
会場：Waterville Valley Resort Waterville Valley, NH
・14th International Congress on Amino Acids, Peptides and Proteins
会期：2015 年 8 月 3 日 ( 月 ) 〜 8 日（土）会場：Vienna-Austria
8. その他
第 6 回総会の議長候補に植村武史氏（㈱アミンファーマ研究所）、副議長候補に坂本明彦氏（千葉科学大）を推薦することとした。
以上- 33 -

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年会報告

日本ポリアミン学会

第６回総会議事録

日時 : 平成 27 年 1 月 20 日（金）14:30 〜 15:15
会場 : 東京海洋大学

品川キャンパス

楽水会館 大会議室

議事 :
1. 議長および副議長の選出
議長：植村 武史 氏（株式会社アミンファーマ研究所）を選出した。
副議長：坂本 明彦 氏（千葉科学大学）を選出した。
2. 役員人事
評議員会において選出した以下の役員が承認された。
・第 8 回年会担当役員
河合剛太 氏および根本直樹 氏（千葉工業大学）
・第 9 回年会担当役員
藤原伸介 氏（関西学院大学）
3. 事業報告
1) 会員数・会費納入状況
2) 学会誌の発行

ポリアミン Vol.1 No.1 (2014 年 4 月 )、No.2 (2014 年 10 月 )4. 事業計画
以下の事業計画が提案され承認された。
1) 第 7 回年会（京都）年会担当役員：鈴木秀之（京都工芸繊維大学）
2) 第 8 回年会（千葉）年会担当役員：河合剛太（千葉工業大学）
3) 第 9 回年会（兵庫）年会担当役員：藤原伸介（関西学院大学）
4) 学会誌「ポリアミン」の発行（２回 / 年を予定）
5) 若手海外渡航補助（2015 年ゴードン会議＆セミナーにおいて発表を予定している学部生、大学院生およびポスドクに対して６名程度）
6) トランスグルタミナーゼ・ポリアミン合同学術集会
7) 第 88 回日本生化学会大会 ( 分子生物学会との合同開催、神戸 )平成 27 年 12 月 1 日（火）〜 12 月 4 日（金）＊ワークショップ企画応募予定（オーガナイザー：慈恵医大・村井、協同乳業・松本）
5. 会計報告
1) 平成 25 年度決算および監査報告がなされ、承認された。
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The Japanese Society of Polyamine Research年会報告2) 平成 26 年度収支状況が報告された。
3) 平成 27 年度予算が提案され、承認された。
6. 事務連絡
開催予定の国際会議
・Gordon Research conference(GRC) & Gordon Research Seminer(GRS)2015 Meeting Polyamines“Polyamines and Their Metabolic Regulation in Biology and Disease”
会期：2015 年 6 月 14 日 ( 日 ) 〜 19 日 ( 金 )会場：Waterville Valley Resort, Waterville Valley, NH
Chairs: Otto Phanstiel Iv & Keiko Kashiwagi
・14th International Congress on Amino Acids, Peptides and Proteins
会期：2015 年 8 月 3 日 ( 月 ) 〜 8 日（土）会場：Vienna-Austria
以上- 35 -

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事務連絡

会計報告

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日本ポリアミン学会

The Japanese Society of Polyamine Research

事務連絡

学会より

○学会費の納入をお願いします

今年度の学会費の納入をお願いいたします。会計年度は４月からとなっております。研究室でま と め て 納 入 さ れ る 場 合 は、 事 務 局（polyamine@jikei.ac.jp、TEL:03-3433-1111( 内 )2275、
FAX:03-3436-3897）まで納入者全員のお名前をお知らせください。これまでの未納分のある方は合わせてご納入ください。よろしくお願いいたします。
1. 会費（年額） 正会員

一般 4,000 円

賛助会員
2. 振込先学生 2,000 円

30,000 円

三菱東京 UFJ 銀行

虎ノ門支店（支店番号：041）

普通口座

日本ポリアミン学会

0084363

事務局

松藤千弥○退会の届出をお願いします
卒業等でポリアミン学会を退会される方は事務局までお知らせください。既卒の方については研究室の代表の方がまとめてご報告くださると助かります。
○ 2015 GRC & GRS のお知らせ
2015 Gordon Research Conference on Polyamine & Gordon Research Seminar が 2015 年 6月 14 日から 6 月 19 日までの日程（GRS は 6/13 〜 6/14）で、米国ニューハンプシャー州で開催されます。GRC の参加締切が 2015 年 5 月 17 日となっております。奮ってご参加ください。
詳細は会議 HP でご確認ください。
http://www.grc.org/programs.aspx?id=11973○ 14th International Congress on Amino Acids, Peptides and Proteins のお知らせ
上記国際会議が 2015 年 8 月 3 日から 7 日まで Austria の Vienna で開催されます。詳細は会議
HP でご確認ください。
http://www.meduniwien.ac.at/icaap/○日本ポリアミン学会

第 7 回年会のお知らせ

会期：平成 27 年 11 月 13 日（金）、14 日（土）
会場：京都工芸繊維大学（予定）
年会担当：鈴木秀之（京都工芸繊維大学）
11 月は観光シーズンで京都のホテルが取りにくくなると予想されます。早めのご予約をお願いいたします。

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事務連絡○第６回トランスグルタミナーゼ研究会 & ポリアミン学会 合同学術集会のお知らせ
１年おきに、生化学会開催期間中もしくはその前後に、トランスグルタミナーゼ研究会 & ポリア
ミン学会 合同学術集会が開催されており、今年は第６回開催の年になります。日程や会場などの詳細が決まり次第、ポリアミン学会 HP 上に掲載し、メールでもご案内する予定です。10 月発刊
予定のポリアミン学会誌にも詳細を掲載いたします。

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編集後記

藤の花が綺麗に咲いて、暑いくらいの毎日ですが、皆様いかがお過ごしでしょうか。新年度も約一ヶ月が過ぎ、新しい研究室や職場、新しい仲間と新鮮な気持ちで益々ご活躍のことと思います。
ポリアミン学会誌も、この２０１５年４月号で一周年を迎えます。本号も、柏木先生によるポリア
ミン輸送系の解説をはじめ、学会レビューなど、読み応えのある内容になっています。特に、今回から始まりましたシリーズ実験手技ノートは、新しくポリアミンの実験を始める方には大変役に立つのではないかと思います。
ポリアミン学会誌は、学会としての情報の蓄積と保存という役割はもちろんですが、世界の第一線で活躍中の先生方の研究を分かりやすく紹介し、また、会員の皆様の情報交換の場として、ポリアミン研究を始めたばかりの方やポリアミンに縁のなかった方にポリアミンを知ってもらい、興味を持って頂いて、我々の仲間になって欲しいという思いで作製しています。巻頭言で松藤先生が述べられているように、ポリアミン研究をきっかけとしてこれから世界へ向かって活躍していく方もおられると思います。ポリアミン研究の歴史と最前線を、日本語の平易な文章で勉強出来る教科書的な存在として、ポリアミン学会誌は必ず役に立つと思います。まだまだ手探りですが、皆様のポリアミン研究をサポートできるよう、今後もますます面白く、役に立つ内容で素敵な学会誌にしていきたいと考えております。この「ポリアミン」は、皆様の多大なるご協力によって出来ております。今後とも、どうぞよろしくお願い致します。
学会誌をよりよくするため、皆様からの感想、ご意見をお待ちしております。
（広報委員会

委員

植村

武史）

日本ポリアミン学会

学会誌「ポリアミン」

第 2 巻 1 号（2015 年 4 月）
発行：日本ポリアミン学会
http://pa.umin.jp/
polyamine@jikei.ac.jp
製作：日本ポリアミン学会- 39 -

広報委員会

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