シカ雌雄判別キット
Sika Deer Sexing Kit

取扱説明書
Version 5.0.0
製品コードNE0141

シカ雌雄判別キット
取扱説明書 version 5. 0. 0
【はじめにお読みください】
このたびは、シカ雌雄判別キットをお買い上げ頂き、誠にありがとうございます。この取扱説明書をよくお読みの上、正しい方法でキットを使用してください。
使用上の注意1.

本キットは、LAMP法を用いてニホンジカ (以下、シカと表記します) の体毛から雌雄を判別するための試薬です。
医療行為および臨床診断等の目的では使用できません。

2.

本キットの保存方法は、【キット内容と保存温度】 (2 ページ) に記載していますのでご確認ください。各試薬は納品後正しい温度で遮光して保存し、6 ヶ月以内に使用してください。また、過度の冷却および試薬の凍結、融解の繰り返しは避けてください。

3.

本キットを使用する際は、この取扱説明書の記載内容に従ってください。記載内容と異なる使用方法および使用目的により発生するトラブルに関しましては、株式会社ニッポンジーンでは一切の責任を負いかねますので、あらかじめご了承ください。

4.

本キットによる判定結果を二次利用する場合は、必ず使用者の責任の下で行ってください。キット性能の異常によって発生するトラブルの場合を除き、株式会社ニッポンジーンでは一切の責任を負いかねますので、あらかじ
めご了承ください。

5.

検査環境の汚染を防ぐため、検査後サンプルおよび Deer 陽性コントロールの電気泳動法等による操作やオー
トクレーブ高圧滅菌処理は行わないでください。

6.

本キットに含まれていない化合物を併用する場合は、使用する化合物の危険性に関して十分な知識が必要です。また、本キットに含まれている試薬に他の化合物を混合しないでください。本キットの安全な取り扱いについては株式会社ニッポンジーンホームページにて製品安全データシート (MSDS) を公開していますので、ご参照ください。
株式会社ニッポンジーン； http://nippongene-analysis.com/

7.

本キットは食べ物ではありません。飲み込んだり、目に入れたりしないようご注意ください。検査中は皮膚等に試薬が触れないよう、白衣、手袋等で身体を保護してください。

8.

LAMP 法は栄研化学株式会社が特許を保有しています。株式会社ニッポンジーンは、LAMP法を用いたシカ雌
雄判別用試薬の開発、製造、および販売を許諾されています。

目次
ページ
1.

キット説明 ························································································ 1
シカ雌雄判別キットの概要
シカの雌雄判別
LAMP (Loop-mediated Isothermal Amplification) 法
本キットに含まれる合成オリゴヌクレオチドに関して

2.

キット内容 ························································································ 2
キット内容と保存温度

3.

必要な器具、機器··············································································· 34.

キット使用方法 ·················································································· 5
簡易プロトコル ································································································· 5
検査を行う前の準備および注意事項 ······································································ 7
サンプルの準備
器具、機器の準備
検査環境
詳細な使用方法 ······························································································· 9
DNA の抽出
検査反応
判定

5.

トラブルシューティング ········································································ 15

6.

文献・資料 ······················································································· 16

7.

付録 ······························································································ 16
品質管理
Deer 陽性コントロールのコピー数

本キットに含まれている LAMP プライマーセットおよびこの LAMP プライマーセットを用いた LAMP
法によるシカ雌雄判別の技術は、静岡県新成長戦略研究事業「イノシシと戦う集落づくりと森林づくりに必要なシカ管理に関する研究」において、静岡県農林技術研究所森林・林業研究センターによって開発されました。

1. キット説明【シカ雌雄判別キットの概要】
本キットは LAMP 法を利用してシカの雌雄を判別するキットです。LAMP 法はインフルエンザウイルス
感染の診断およびノロウイルス、レジオネラ属菌、サルモネラ属菌、腸管出血性大腸菌等の検査にも用いられている迅速、簡便な DNA 増幅技術であり、その優れた特異性と高い感度を最大の特長とします。本キットでは、LAMP 法によりシカゲノム DNA の一部を増幅し、増幅の有無からシカの雌雄を判定します。
検出に必要な操作は、キットに添付されているDeer抽出液を用いてシカの体毛から抽出したゲノム
DNAを検査溶液 (Deer検査液①あるいはDeer検査液②と、Deer酵素液、蛍光発色液の混合液) に加えて64˚Cに30分間保温するのみであり、きわめて簡便です。
体毛がオス由来である場合はDeer検査液①およびDeer検査液②の両方で、体毛がメス由来である
場合はDeer検査液②のみで、本キットに含まれているLAMPプライマーセットによって、シカゲノムDNAに特徴的な配列が増幅されます。
判定にはDNA増幅の有無を蛍光発色液の発色の有無によって確認する目視判定法を採用しており、DNA増幅反応から検出までを同一反応チューブ内の完全閉鎖系で行うため、安全に短時間でシカの雌雄を判別することが可能です。
【シカの雌雄判別】シカの増加により、高山植物、スギ、ヒノキなどの食害が深刻化しており、各地の自治体が捕獲を行っています。個体群の長期に渡る安定的な維持および農林業被害の軽減、生態系の劣化の防止と生物多様性の保全のために、シカの雌雄の分布を正確に把握し、メスを効率良く捕獲することが重要とされています。
シカの雌雄判別には遺伝子検査による方法が用いられていますが、既存の PCR 法は検体の前処理が煩雑で時間を要し、また専用の設備・器具や高額な機器が必要とされています。
本キットを用いることにより、簡便かつ迅速にシカの雌雄の判別を行うことができます。
【LAMP (Loop-mediated Isothermal Amplification) 法】
LAMP法は、一定温度でDNA増幅反応が進行する画期的な技術です。従来の方法と比較して特異性に優れ、またその高いDNA増幅反応効率から、短時間反応および簡易検出が可能である等の利点を有しています。LAMP法の詳細な原理については、栄研化学株式会社ホームページをご参照ください。
栄研化学株式会社
Eiken GENOME SITE； http://loopamp.eiken.co.jp/【本キットに含まれる合成オリゴヌクレオチドに関して】
本キットに含まれるプライマーは、全て「リライアブル＆トレーサブルオリゴ」を使用しています。「リライアブル＆トレーサブルオリゴ」は、株式会社ニッポンジーン マテリアルが製造する高信頼性オリゴヌクレオチド「リライアブルオリゴ」の一つです。ISO 13485:2003 に準拠した品質マネジメントシステム、専用陽圧ルームでの製造、チェックリストによる工程管理、トレーサビリティー完備を特長としています。詳細に関しましては、株式会社ニッポンジーン マテリアルホームページをご参照ください。
株式会社ニッポンジーン マテリアル； http://www.nippongenematerial.com/

12. キット内容【キット内容と保存温度】
シカ雌雄判別キット
48 テスト用 (製品コード： NE0141)
試薬名(チューブラベル)
取扱説明書
検査用チューブ
抽出用チューブ
Deer 検査液①
Deer 検査液②
Deer 酵素液
蛍光発色液
Deer 陽性コントロール
ミネラルオイル
Deer 抽出液

頭部ラベル色
赤色
緑色
黄色
紫色
灰色
青色
水色

内容量
48 テスト用
1部
2 x 50 本
50 本
720 µl
720 µl80 µl
80 µl
100 µl2 x 1,000 µl
3 x 850 µl

保存温度
室温
室温
室温
-20˚C (遮光)-20˚C (遮光)-20˚C (遮光)-20˚C (遮光)-20˚C (遮光)-20˚C (遮光)-20˚C (遮光)取り扱い上の注意

本キットは、シカのオス特異的な遺伝子および雌雄共通遺伝子を検出するための検査液をそれぞれ 48 テスト分ずつ含んでいます (オス特異的： Deer 検査液①、雌雄共通： Deer 検査液②)。



本キットでは、各検査液に対し 50 テスト分の検査溶液をまとめて作製することで、48 テスト分の検査反応を行うことが可能です。48 テスト分以下の検査反応を複数回に分けて行う場合、試薬が不足しますのでご注意ください。



検査用チューブに水滴が付着している場合は、開封前に完全に乾燥させてから使用してください。

取扱説明書および検査用チューブ、抽出用チューブ以外の試薬は-20˚C で遮光して保存し、納品後 6 ヶ月以内に使用
してください。



試薬は使用ごとに融解し、残った試薬は再度-20˚Cで保存してください。凍結、融解の繰り返しにより製品の性能が低下する恐れがありますので、必要な場合は試薬を数回分ごとに小分けして保存してください。

Deer 酵素液を室温あるいは冷蔵庫等に長時間放置したり、過度の冷却で凍結させたりしないようご注意ください。酵素の働きが低下する可能性があります。

Deer 陽性コントロールは、シカゲノム DNA に特徴的な配列を含む DNA 溶液です。検査環境への汚染を防ぐため、使用の際には溶液を飛散させたり、溶液に触れたフィルター付マイクロチップが他の器具や試薬に接触したりしないようご注意ください。



連続分注を行うと試薬への汚染が発生する可能性がありますので、フィルター付マイクロチップは 1 回分注するごとに使い捨てとして使用してください。



ミネラルオイルに関しては、労働安全衛生法第五十七条の二第一項「名称等を通知すべき有害物 (第五百五十一号)」に該当します。必ず MSDS を参照の上、使用してください。

2

3. 必要な器具、機器
 インキュベーター (恒温器)
ウォーターバス、ヒートブロック、サーマルサイ
クラー、エアーインキュベーター等、64˚C、80˚C、
94˚C それぞれを保持する機器が必要です。

【必ずご準備頂く器具、機器】*

 マイクロピペット(0.5-10 µl、10-100 µl、200-1,000 µl)* フィルター付マイクロチップ (滅菌済) ピンセット 氷 (クラッシュアイス) ポリエチレン袋
 エタノール* マイクロチューブ(1.5 ml あるいは 2.0 ml)【その他の器具、機器】
下記の器具、機器は本キットの使用に必須ではありませんが、必要に応じてご準備ください。
*

 チューブラック

 使い捨て手袋3 アルミラックあるいはプレートラック

 簡易遠心機 (0.2 ml チューブ用) ボルテックスミキサー*

 フロートプレート
ウォーターバスで保温する際に使用します。
*

 UV照射装置
蛍光発色液 による検出の際に使用します。
240-260 nm あるいは 350-370 nm の範囲の波長を出力する装置が必要です。

 簡易遠心機 (1.5 ml チューブ用)

 防護用ゴーグルあるいはフェイスシールド＊マイクロピペット、ピペットチップ、マイクロチューブなど、LAMP 法を用いた遺伝子検査を行うために必要な器具・消耗品類をまとめた遺伝子検査ツールボックス (製品コード： NE4111) も販売しております。

44. キット使用方法【簡易プロトコル】
本キットの詳細な使用方法は 7 ページ以降を参照してください。

簡易プロトコル1.

Deer 抽出液を 1 頭分あたり 50 µl ずつ分注する
Deer 抽出液 50 µl

2.

シカ下顎より黒く長い体毛 1 本を単離し、毛根が Deer 抽出液に完全に浸るように入れる

3.

抽出用チューブのキャップを閉じ、64˚C で 5 分間保温する (シカゲノム DNA の抽出)4.

94˚C で 5 分間保温する (シカゲノム DNA とする)

5.

検査溶液を必要量まとめて作製する
試薬
Deer 検査液①

1 テストあたり

24+1 テスト*

48+2 テスト*

14.4 µl360.0 µl720.0 µl

蛍光発色液

0.8 µl20.0 µl40.0 µl

Deer 酵素液
検査溶液合計0.8 µl16.0 µl20.0 µl400.0 µl40.0 µl800.0 µlあるいはDeer 検査液②* 分注時の液量の不足を防ぐため、1 から 2 テスト分多めに作製する。

重要
本キットでは、1 検体ごとに Deer 検査液①の検査溶液と、Deer 検査液②の検査溶液の両方を必ず作製してください。片方の検査溶液のみでの判定はできません。

5

簡易プロトコル
6.

検査溶液を 1 テストあたり 16.0 µl ずつ分注する

7.

下記のサンプルあるいはシカゲノム DNA 4.0 µl を添加する
陰性コントロール検査溶液

陽性コントロール検査溶液

DNAサンプル

体毛を入れずに熱処理を施した
Deer 抽出液
4.0 µlDNA サンプル
4.0 µl8.

ミネラルオイルを 20.0 µl 添加する

9.

64˚C、30 分間

Deer
陽性コントロール
4.0 µl10. 80˚C、2 分間
11. 判定UV ランプ

発色パターン

目視

I

II

陽性

陰性

陽性

陽性

オスと判定

メスと判定

Deer 検査液①
検査溶液

陰性：
淡い赤色

陽性：
鮮明な黄緑色Deer 検査液②
検査溶液

判定
6

【検査を行う前の準備および注意事項】
サンプルの準備

コントロール本キットには、検査の成否を確認するためのDeer陽性コントロールが添付されています。検査の成否を確認するには、Deer陽性コントロールを添加する「陽性コントロール検査溶液」および体毛を入れずに熱処理を施したDeer抽出液を添加する「陰性コントロール検査溶液」の作製が重要です。


シカゲノム DNA サンプル準備

検査にはシカ下顎の黒く長い体毛から抽出したDNAを使用します。本キットは、シカ体毛の毛根からDNA の簡易抽出を行うための試薬 (Deer 抽出液) 及び簡易抽出プロトコルを備えていますので、検査を行う前に DNA を準備してください。
器具、機器の準備

インキュベーター (恒温器)

インキュベーター (恒温器) の電源を入れ、それぞれ温度を設定します。ウォーターバス、ヒートブロックを使用する場合は温度が安定するまでに時間を要する場合がありますので、あらかじめ電源を入れ、温度計を用いて目的の温度に到達していることを確認してください。エアーインキュベーターを用いる場合、機器によってはドアの開閉時に庫内温度が大きく変化しますので、ドアの開閉は速やかに行ってください。


器具
器具

使用方法
各区域専用とし、他の区域で使用した場合は核酸除去操作を施してから元の場
マイクロピペット所に戻してください。
各区域専用とし、他の区域で使用した場合は核酸除去操作を施してから元の場
チューブラック所に戻してください。
市販のガンマ線滅菌済チューブ等、核酸フリー、ヌクレアーゼフリーのグレード
チューブを選択してください。
市販のガンマ線滅菌済疎水性フィルター付チップ等、核酸フリー、ヌクレアーゼ
フ ィ ル タ ー 付 マ イ ク ロ チ ッ プ フリーのグレードを選択し、各区域にて開封してください。また、連続分注を行う(滅菌済)と試薬への汚染が発生する可能性がありますので、1 回ごとに使い捨てとして使用してください。
筆記用具
各区域専用とし、持込書類を置く専用のスペースを確保してください。
手袋
使い捨てとし、汚染が疑われる場合はすぐに手袋を交換してください。
白衣
各区域専用とし、袖口からの汚染に注意してください。

7

検査環境
LAMP 法は高感度な DNA 増幅技術であるため、検査環境に Deer 陽性コントロールや検査後サンプ
ル等、鋳型となる核酸の汚染が発生すると、以降正確な検査を行うことが困難になります。サンプルの取り扱いにおいては、作業用の着衣および器具への付着に十分注意し、着衣の交換を徹底してください。以後の検査における誤判定を防止するため、使用済みのチップ、チューブ、検査後サンプルは二重にしたビニール袋にまとめて廃棄してください。また、検査後サンプルおよび Deer 陽性コントロールの電気泳動法等による操作やオートクレーブ高圧滅菌処理は行わないでください。


作業区域

核酸抽出および核酸増幅を実施していない (核酸による汚染が存在しない) クリーンベンチあるいは作業台を試薬調製作業区域とし、検査溶液は試薬調製作業区域にて作製してください。試薬調製作
業区域ではDeer陽性コントロールおよびLAMP法において鋳型となる核酸を含む溶液、試薬類の取り扱いは行わないでください。
検査溶液へのサンプルおよびDeer陽性コントロールの添加を行うスペースは試薬調製作業区域と区分し、専用の核酸取扱区域を設けてください。


核酸除去操作

器具は常に清潔に保ってください。洗浄が可能である器具は大量の水道水でよくすすぐことにより、付着した核酸を希釈、除去できます。
高濃度の核酸を取り扱った場合など、核酸による汚染が疑われるような場合には、1%次亜塩素酸ナ
トリウム水溶液を用いて検査環境中に存在する核酸の除去操作を行います。次亜塩素酸ナトリウム水
溶液は塩素ガスを発生するので、使用の際には換気に十分注意してください。また、金属に対する腐食性があるため、金属に対して使用する際は、迅速に塩素成分を拭き取る等の対応が必要です。高温環境下における劣化が著しいため、1%水溶液調製後の経過日数や保存温度に注意してください。
＜方法＞i) 使い捨て手袋を装着します。
ii) 有効塩素濃度 10,000 ppm (1%) の次亜塩素酸ナトリウム水溶液を準備します。
iii) 次亜塩素酸ナトリウム水溶液を含ませたペーパータオルで作業台、器具を丁寧に拭き、余分な塩
素成分は 70%エタノールを含ませたペーパータオルで拭き取ります。
iv) 非金属の器具は次亜塩素酸ナトリウム水溶液に 1 時間以上浸し、よくすすいで乾燥します。
v) 作業台、器具は常に清潔に保ち、定期的に次亜塩素酸ナトリウム水溶液による拭き取り清掃を行います。

8

【詳細な使用方法】
DNA の抽出重要
本キットは、シカの体毛から DNA の簡易抽出を行うための Deer 抽出液、抽出用チューブ、および抽出プロトコルを備えています。
シカ体毛の採取シカ下顎から、黒く長い体毛を抜き取ります。目視にて、体毛に毛根部が付いていることを確認してください。

試薬の融解

Deer抽出液を取り出し、室温で完全に融解します。容器のキャップを閉じた状態で容器を 10 回上下に反転させて混合し、均一にした
後、抽出用チューブに 50.0 µlを分注します。次に、採取した体毛を毛根部が完全に浸るようにDeer抽出液に入れます。
抽出用チューブを 64˚Cで 5 分間保温した後、94˚Cで 5 分間保温して得られた溶液をシカゲノムDNA (以下DNAサンプル) とします。
DNA サンプルを保管する場合は体毛を除去し、使用後は-20˚C に保管してください。
重要本キットに添付の抽出用チューブと容量、形状、および材質の異なるチューブを使用すると、誤判定の原因となる場合がありますので、使用しないでください。また、2 本以上の体毛を入れると抽出及び以降の検査において効率が低下することがあります。体毛に血液や汚れが付着している場合には、エタノールに浸して洗浄してから使用してください。

9

検査反応
試薬の融解
Deer検査液①、Deer検査液②、Deer陽性コントロール、ミネラルオイルを取り出し、室温で完全に融解します。Deer酵素液および蛍光発色液は-20˚Cでは凍結しないため、使用する直前にキットから取り出します。
混合とスピンダウン
チューブの腹を指で数回軽く叩く (以下タッピング) あるいはボル
テックスミキサーにて 1 秒間 x 3 回の撹拌により混合し均一にした後、簡易遠心機を用いて溶液をチューブの底に集め (以下スピンダウン)、
試薬を氷上に静置します。

検査溶液の作製
マイクロチューブ (1.5 mlあるいは 2.0 ml) に下記の試薬を必要テ
スト数分ずつ分注し、タッピングあるいはボルテックスミキサーにて 1
秒間 x 3 回の撹拌により混合した後、スピンダウンを行います。これを検査溶液とし、氷上に静置しておきます。

＜容量＞
試薬
1 テストあたり
24+1 テスト*
48+2 テスト*
Deer 検査液①あるいは14.4 µl360.0 µl720.0 µl
Deer 検査液②
蛍光発色液
0.8 µl20.0 µl40.0 µl
Deer 酵素液
0.8 µl20.0 µl40.0 µl
検査溶液合計16.0 µl400.0 µl800.0 µl*
分注時の液量の不足を防ぐため、1 から 2 テスト分多めに作製する。
重要連続分注を行うと試薬への汚染が発生する可能性がありますので、フィルター付マイクロチップは 1
回ごとに使い捨てとして使用してください。
Deer 酵素液は粘性が高いため、分注の際、フィルター付マイクロチップの周りに過剰に付着しないようご注意ください。また、使用前にスピンダウンを行ってください。
本キットでは、1 検体ごとに Deer 検査液①の検査溶液と、Deer 検査液②の検査溶液の両方を必ず作製してください。片方の検査溶液のみでの判定はできません。

10

検査溶液の分注
核酸の汚染がないピンセットを用いて検査用チューブを袋から取り出し、アルミブロックあるいはプレートラックに立て、検査溶液を16.0 µl ずつ分注します。

重要本キットに添付の検査用チューブと容量、形状、および材質の異なるチューブを使用すると、誤判定の原因となる場合がありますので、使用しないでください。
DNAサンプルの添加
DNA サンプル 4.0 µl を検査溶液に添加後、蒸発による検査溶液の濃縮を防ぐため本キットに添付のミネラルオイルを 20.0 µl 程度重層し、キャップを閉じます (蒸発による検査溶液の濃縮が起こると検査反応の効率が著しく低下しますのでご注意ください)。なお、インキュベーター (恒温器) として、ホット
ボンネット機能を有するサーマルサイクラーを使用する場合には、ミネラルオイルの添加は不要です。
重要
必要に応じて、陰性コントロールと陽性コントロールを作製してください。
この時の注意事項として、サンプルとミネラルオイルの添加は必ず、①陰性コントロールサンプル、②DNA サンプル、③陽性コントロールサンプル、の順に行ってください。また、サンプル添加後は速やかにキャップを閉じてください。
なお、陰性コントロールサンプルには体毛を入れずに熱処理を施した Deer 抽出液を 4.0 µl 使用し、陽性コントロールサンプルには 4.0 µl の Deer 陽性コントロールを使用してください。

11

検査反応
全てのキャップを閉じた状態でタッピングあるいはボルテックスミ
キサーにて 1 秒間 x 3 回の撹拌にて混合した後、スピンダウンを行い、ウォーターバス、ヒートブロック、サーマルサイクラー、エアーイン
キュベーターなどを用いて 64˚C で 30 分間保温します。
ウォーターバスを使用する場合はフロートプレートを使用し、検査用チューブが反応中に傾かないようにしてください。
ヒートブロック

フロートプレート12

判定
検査の成否の判定
UV 照射なし

陰性コントロール

陽性コントロール

UV 照射あり

陰性コントロール

30 分間保温した後、80˚Cで 2 分間の熱処理により検査反応を停止し、判定を行います。
使用前の蛍光発色液は淡い赤色を呈していますが、検査反応の進行により鮮明な黄緑色に変化します。この発色は蛍光に由来しているため、UVを照射することでより正確な判定が可能です。この場合は、別途UV照射装置 (240-260 nmあるいは 350-370 nmの波長を出力) および防護用ゴーグルあるいはフェイスシールドが必要になります。波長が320 nm付近の場合、陰性でも蛍光を発して見える場合がありますので、ご注意ください。
最初に、陽性コントロール検査溶液が蛍光を発色し、陰性コント
ロール検査溶液が蛍光を発色していないことを確認してください。これを満たしていない場合は検査結果を無効とし、原因を究明してくだ
さい。

陽性コントロール重要
本キットでは、検査結果の判定は 30 分間が経過した時点の発色で行います。誤判定の原因となりますので判定は検査反応終了後速やかに行ってください。

13サンプルの判定
コントロール検査溶液の判定においてその検査が有効とされた場合、次に、サンプルの判定を行います。判定はコントロール検査溶液と同様に蛍光の発色の有無を確認してください。
＜判定のポイント＞
雌雄の判定は、検査溶液①、検査溶液②の発色パターンの組合せから行います。下図の発色パターン I および II を参照してください。
＜発色パターンの例＞
発色パターン

I

II

III

IV

陽性

陰性

陰性

陽性

陽性

陽性

陰性

陰性

オスと判定

メスと判定

Deer 検査液①
検査溶液

Deer 検査液②
検査溶液

判定

その他 (下記参照)

パターン I の場合
体毛はシカのオスに由来すると判定されます。
パターン II の場合
体毛はシカのメスに由来すると判定されます。
パターン III あるいは IV の場合
再度検査をやり直してください。再検査でも同様の結果が得られる場合、体毛がシカではない可能性があります。

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5. トラブルシューティング
本キットの使用において何らかの問題が発生した場合は、以下の項目に従って対処してください。その他の不明な点については株式会社ニッポンジーンまでお問い合わせください。
問題点
コントロール検査溶液が正確な発色を示さない

蛍光発色液が変色した検査溶液が蒸発した

蛍光の発色の有無を 判断しにくい

試薬が不足する原因および対処法
A. Deer 陽性コントロールの添加量が過剰である。
Deer 陽性コントロールの添加量が過剰になると検査反応の効率が低下する場合があります。Deer 陽性コントロールの添加量は取扱説明書の指示に従ってください。
B. 試薬あるいは検査環境に汚染が存在する。
陰性コントロール検査溶液が発色している場合、鋳型となる核酸の混入が疑われます。試薬および検査環境の汚染モニタリング、1%
次亜塩素酸ナトリウム水溶液による検査器具、機器類の拭き取り操作を行い、汚染を完全に除去した後に検査を実施してください。
C. キレート化合物あるいは金属イオンが持ち込まれている。
EDTA (エチレンジアミン四酢酸) 等のキレート化合物が存在すると検査反応の進行に関わらず蛍光発色液が蛍光を発色します。一方、金属イオンが多量に存在する場合は蛍光発色液の発色が阻害され、判定が困難になりますのでご注意ください。
D. 反応温度、操作手順に誤りがある。
検査の工程で問題が発生していないか確認してください。
A. 検査反応終了後、速やかに判定を行ってください。
蛍光発色液は長時間放置すると検査反応の進行に関わらず蛍光の発色あるいは消光が起こり、誤判定の原因となります。保存および取り扱いは本取扱説明書の指示に従ってください。
A. 反応チューブが均一に加熱されていない。
ウォーターバス、ヒートブロックを使用する場合に、検査用チューブが均一に加熱されないと蒸発による検査溶液の濃縮が起こり、検査反応の効率が低下します。本キットに添付のミネラルオイルを必ず添加してください。
A. 励起波長が合っていない。
240-260 nm あるいは 350-370 nm の波長を出力する UV 照射装置が必要です。波長が 320 nm 付近の場合、陰性でも蛍光を発する場
合がありますので、ご注意ください。
A. チューブ内壁に試薬が飛散、付着している。
使用前にスピンダウンを行ってください。
B. 保存中に試薬が蒸発している。
使用後はキャップを完全に閉じてください。

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6. 文献・資料
1. Yamazaki S, Motoi Y, Nagai K, ,Ishinazaka T, Asano M, Suzuki M. (2011) Sex determination of sika
deer (Cervus nippon yesoensis) using nested PCR from feces collected in the field. J Vet Med Sci. 73
1611
2. Notomi T, Okayama H, Masubuchi H, Yonekawa T, Watanabe K, Amino N, Hase T. (2000)
Loop-mediated isothermal amplification of DNA. Nucleic Acids Res. 28 (12): e63
3. Prince AM, Andrus L. (1992) PCR: how to kill unwanted DNA. Biotechniques. 12 (3): 358

7. 付録【品質管理】
キットに添付の Deer 陽性コントロール 4.0 µl を鋳型として 20.0 µl (1 テスト分) の容量で DNA 増幅反応を行い、64˚C、30 分間で蛍光発色液が発色することを確認しています。
【Deer 陽性コントロールのコピー数】
Deer陽性コントロールには、4.0 µlあたりおよそ 1x 109コピーの標的配列が含まれています。Deer陽性コントロールは、Deer検査液①およびDeer検査液②に対し共通に使用することが可能です。

16







記載内容や製品仕様、価格に関しては予告なく変更する場合があります。
本取扱説明書の記載内容は 2018 年 5 月現在のものです。最新の取扱説明書は株式会社ニッポンジーンホームペー
ジからダウンロードしてください。
「ニッポンジーン」および「NIPPON GENE」は、株式会社ニッポンジーンの日本における登録商標です。
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