RNA抽出用試薬

ISOGENISOGEN-LS
マニュアル

株式会社ニッポンジーン

目

次
１．原

理

2

２．ＲＮＡの単離

3

３．ＤＮＡの単離

13

４．タンパク質の単離

17５．参考文献19

使用上の注意：・ 本品は試験研究用試薬ですので、医薬品、その他の目的にはご使用になれません。また、試薬についての基本的な知識のある方以外は取り扱わないでください。
・ ISOGEN及びISOGEN－LSは医薬用外劇物（フェノール製剤）ですので、お取り扱いにはご注意ください。
・ ご使用の際には適切な保護具（手袋、眼鏡等）を着用してください。
・ もし目に入ったり皮膚に付着した場合は、大量の水で少なくとも15分間は洗い流し、医師の診察を受けてください。
・ 本品のお取り扱いは、マニュアル記載内容通りに行なってください。
・ マニュアル記載内容と異なったお取り扱いによるトラブルにつきましては、弊社では責任を負いかねます。
・ 安全性データシート（ＳＤＳ）につきましては弊社ホームページにてご覧いただけます。
（URL http://www.nippongene.com/）

1

１．原

理

ISOGEN及びISOGEN－LSは、ヒト、動物、植物及び細菌からのRNA抽出用試薬である。液相分離による方法を用いており、同一試料からDNA及びタンパク質も単離することが可能である。一連の操作でRNA、DNA、タンパク質を単離できるので、貴重な試料の分析に有効であり、また、操作が簡単なので、試料数が多い場合にも便利である。
ISOGEN及びISOGEN－LSは、フェノールとチオシアン酸グアニジンを含む均一な液体であり、ISOGEN－LSはISOGEN よりもフェノール含量が多い。ISOGENは組織や培養細胞等の試料に、ISOGEN－LS は血液等、容量が大きく（＞100 μl；1.5 ml プラスチックチューブで処理する場合）、さらに濃縮が面倒な液体試料に有効である。試料にISOGEN またはISOGEN－LS を加えて溶解またはホモジナイゼーションした後、クロロホルムを加えて遠心分離するとホモジネートは水相、有機相及び中間相の３相に分離する。水相にはRNAのみが存在
し、DNAとタンパク質は中間相以下に存在する。従って、まず、水相を採取してイソプロ
パノールを加えてRNAを沈殿させ、残った中間相と有機相にエタノールを加えてDNAを、
さらに、イソプロパノールを加えてタンパク質を沈殿させることによりRNA、DNA及びタンパク質を順次単離することができる。
試 料
ISOGEN or ISOGEN-LS
ホモジナイズ（または溶解）
クロロホルムイソプロパノール
水相

RNA
を含む

中間層
有機相

沈澱

洗浄

RNA

沈澱

洗浄

DNA

沈澱

洗浄

タンパク質

エタノール
DNA 及び
タンパク質を含む

イソプロパノール

保存：

２～１０℃

・ 本品は、開封後なるべく早く（お買い求めになった日から６か月以内に）ご使用ください。

・ 本品に変色が認められた場合にはご使用にならないでください。
・ 弊社では本品を室温で送付しておりますが、製品到着後ただちに２～１０℃で保存していただくことにより、問題なくご使用いただけます。

2

２．RNAの単離
ISOGENまたはISOGEN-LSを用いてRNAを単離すると、約１時間で無傷のRNAを高収率で単離することができる。得られたRNAは、DNAやタンパク質の混入がほとんどなく、DNase等の処理をしなくてもそのままノーザン分析、ドットブロットハイブリダイゼーション等に用いることができる。

［プロトコール１－１RNAの単離］以下の操作は、RNase のコンタミを防ぐとともに安全のために手袋を着用し、清潔な環境で行う。なお、クロロホルム、イソプロパノール及びエタノールは別に準備しなければならない。また、チューブは透明なポリプロピレン製を用いるとよい。
サンプル*1) 50-100 mg tissue, 10 cm2 of culture plate, 5-10×106 cells(ISOGEN-LS の場合： 0.25 ml 液体試料)

1 ml ISOGEN（ISOGEN-LS の場合： 0.75 ml）
溶解またはホモジナイゼーション *2)
室温 5分間 放置 *3)
0.2 ml クロロホルム *4)
15 秒間、激しくシェイクして混合
室温 2～3分間 放置
遠心（12,000×g, 15分間, 4°C） *5)
DNA及びタンパク質を単離する場合［プロトコール2、3］*6)
中間相と有機相を4°Cで保存

水相を新しいチューブに移す *7)
0.5 ml または 0.8倍量 イソプロパノール 転倒混和 *5)
室温 5～10分間 放置 *8)
遠心（12,000×g, 10分間, 4°C）
沈殿 *9)
1 ml 70% エタノール
ボルテックスミキサーで混合 *10)
遠心（7,500×g, 5分間, 4°C） *11)

沈殿
風乾 *12)
RNaseフリー水、TE (pH8.0) または 0.5% SDS に溶解

total RNA 溶液 *7) *13)3*1) 1.5 ml プラスチックチューブを用いて処理する場合、組織や培養細胞等、試料の体積が100 μl 以下のものにはISOGEN、血液等、試料の体積が大きい（100 μl を越える）ものにはISOGEN－LS が有効である。試料の体積が大きくても、濃縮により 100 μl 以下にできる場
合には ISOGEN を使用することができる。
培養細胞等の試料の場合、培地等の水分は可能な限り除去する。
ISOGEN-LS を用いて液体試料を処理する場合、試料の容量が 0.25 ml 以下の時には、水を加えて 0.25 ml にする。ISOGEN-LSと試料の容量比が常に３：１になるようにする。血液や血清のように多くの成分が含まれる液体試料は、水で２倍に希釈してからISOGEN-LSを加える（血液 0.125 ml + 水 0.125 ml + ISOGEN-LS 0.75 ml）。
ヘパリンが逆転写酵素活性を阻害するため、ヘパリン採血した試料より抽出した total RNA
を、RT-PCRやPCR に用いるとうまくいかないことがある。EDTA は逆転写酵素活性を阻害しない。
*2) 組織の場合は、ガラス・テフロンあるいはポリトロンホモジナイザーを用いてホモジナ
イゼーションする。また、培養皿に付着して増殖した細胞の場合には、10 ㎝2 当たり 1 mlの ISOGEN を直接加えてピペットで吸出して溶解する。細胞懸濁液の場合には遠心して沈殿させた後、5～10×10６ cells 当たり 1 ml の ISOGEN を加えて同様にピペットで吸出して溶解する。筋、脂肪細胞、植物のようにタンパク質、脂質、糖等を多く含む試料の場合
は、ホモジナイゼーション後に一度遠心（12K×g，10分間，4°C）して、上清を以下の操作に用いる。この時脂肪は最上層に位置することに注意する。
*3) この状態で－70°Cで少なくとも１か月は保存できる。
*4) イソアミルアルコールの添加されたクロロホルム（CIAなど）は使用できない。
*5) ホモジネートは、遠心分離により下層の有機相、中間層及び上層の水相に分かれる。
RNAは水相に含まれるが、この水相にはDNAやタンパク質はほとんど含まれない。この時の水相の体積は、加えたISOGENの体積の約60％である。もし60％より少ない場合には、この後の操作で添加するイソプロパノール量は分取した水相の体積に対して0.8倍容量を添加する。30％以下の場合、組織量を減らすなどして、再度抽出し直すことを推奨する。
*6) ここで得られた中間相と有機相はそれぞれDNA及びタンパク質を単離するため、４°Cにて保存する。ただし、中間相や有機相中に多量の不溶物（カス状、繊維状のもの等）がある場合、DNA 及びタンパク質の単離には適さない。
*7) DNAやタンパク質との夾雑を少なくすることによりRNAの回収率を上げるため、有機相や中間相ができるだけ混入しないように、水相を新しいチューブに移して以下の操作を行う。ゲノムDNAのコンタミが予想される場合には新しいチューブに移した水相に等量のクロロホルムを加え、再抽出を行う。ポリサッカライド、プロテオグリカン、グリコーゲ
ン等の來雑物が含まれることが予想される場合、あるいは最終的に得られたRNAに含まれていることが確認された場合には、high-salt precipitation solution（Code No. 313-06341）とイ
ソプロパノールをそれぞれ水相の 1/2 容量加えてイソプロパノール沈殿を行い、10K×g,
15分遠心してRNAのみを沈殿させると効果的である。この後70％エタノールによる洗浄を行う。
RNA量が10 μg 以下の場合は、ホモジナイゼーション後に３ μl の Ethachinmate を加える
か、水相に Ethachinmate を加えることにより、RNA の収率を上げることができる。

4*8) この状態で、通常RNAの沈殿は見えない。
*9) RNAの沈殿は、ゲル様のペレットとしてチューブの内壁と底に付着する。
*10) この状態で４°Cで少なくとも１週間、－20°Cであれば１年間は保存することができる。
*11) もしRNAの沈殿がチューブの内壁から流れ出しそうな状態の場合は、エタノール洗浄
後の遠心は 12K×g にて行う。
*12) RNAの沈殿は、風乾または５～10分間真空乾燥する。真空遠心機を用いて乾燥してはいけない。沈殿を完全に乾燥してしまうと溶解性が著しく減少する。溶解性が減少したRNAの OD260／OD280は、1.6以下なので目安となる。得られたRNAは、滅菌蒸留水、TE（pH8.0）
または 0.5％ SDS にピペットチップで吸出して溶解し、55～60°Cにて 10～15分間保温するとよい。溶解する蒸留水、0.5％ SDSは、予めジエチルピロカーボネート（DEPC）処理
によってRNaseフリーにしておくか、RNaseフリーグレードの市販品を用いること。また、
TE（pH8.0）を使用する場合は、RNaseフリーグレードの市販品を用いること（ TE に含まれる Tris-HCl は、DEPC処理にて分解してしまう為）。
*13) 得られたRNAをアガロースゲル電気泳動すると、主に約２kbと５kbのリボソーム
RNAのバンドの他に0.1～0.3 kbの低分子RNAと、７～15 kbの高分子RNAを観察することができる。得られたRNAのOD260／OD280 は、1.6～1.8である。
OD260／OD280 を測定する際は、pH＞7.5の水もしくは buffer に溶解して測定する７）。

5

［プロトコール１－２

微量試料からのRNAの単離］

バイオプシー等で得られた微量な試料の場合には、［プロトコール１－１］を若干変えた
ほうがうまくいく場合がある。
以下は、微量試料（ラット下垂体またはヒト肝針生検材料）を用いた場合の例である。
RNaseのコンタミを防ぐとともに安全のために手袋を着用し、清潔な環境で操作を行う。なお、クロロホルム、イソプロパノール及びエタノールは別に準備しなければならない。また、チューブは透明なポリプロピレン製を用いるとよい。
サンプル *1) 1-5 mg tissue
0.8 ml ISOGEN
ピペッティングまたはホモジナイゼーション *2)
室温 5分間放置 *3)
0.2 ml クロロホルム*4)30秒間、激しくシェイクして混合 *5)
4°C 5分間放置
遠心（12,000×g, 15分間, 4°C） *6)
DNA及びタンパク質を単離する場合［プロトコール2、3］*7)
中間相と有機相を4℃で保存

水相を新しいチューブに移す *8)
遠心（12,000×g, 15分間, 4°C） *9)
水相を新しいチューブに移す *8)
3 μl Ethachinmate *10)
0.8倍量 イソプロパノール 転倒混和

室温 30分間放置（または 4°C 一晩放置） *11)
遠心（12,000×g, 15分間, 4°C）
沈

殿 *12)
1 ml 70%エタノール
ボルテックスミキサーで混合 *13)
遠心（7,500×g, 5分間, 4°C） *14)

沈殿
風乾 *15)
RNaseフリー水、TE (pH8.0) または 0.5% SDS に溶解

total RNA 溶液 *16)6

弊社では、ラット下垂体またはヒト肝針生検材料１～５ mgを用いた場合のRNAの収量は、４～８ μg／１～５ mg wet weight という結果が得られた。

*1) やわらかい組織（肝等）は微量の組織からでもRNAをとることができる。
*2) １ ml のガラス・テフロンホモジナイザーを用いるか、あるいは ISOGEN を含んだ
ピペットチップ（１ ml）で組織を吸引・噴出し、粉砕する。
*3) この状態で－70°Cで少なくとも１か月は保存できる。
*4) イソアミルアルコールの添加されたクロロホルム（CIAなど）は使用できない。
*5) 手で激しく振る。
*6) ホモジネートは、遠心分離により下層の有機相、中間層及び上層の水相に分かれる。
RNAは水相に含まれるが、この水相にはDNAやタンパク質はほとんど含まれない。この時の水相の体積は、加えたISOGENの体積の約60％である。また、この後の操作で添加するイ
ソプロパノール量は分取した水相の体積に対して0.8倍容を添加する。水相の体積が30％以下の場合、組織量を減らすなどして、再度抽出し直すことを推奨する。
*7) ここで得られた中間相と有機相は、それぞれDNA及びタンパク質を単離するため、４°Cにて保存する。
*8) DNAやタンパク質との夾雑を少なくすることによりRNAの回収率を上げるため、有機相や中間相をできるだけ混入しないように、水相を新しいチューブに移して以下の操作を行う。
*9) 上清回収の際、混入してくる有機相を分離するため再遠心することにより、水相部の回収率を上げることができる。
*10) 水相に Ethachinmate を加えることによりRNAの収率を上げ、さらにRNAの沈殿を目で確認することができる。
*11) －20°C以下では夾雑物が多くなるので４°Cが望ましい。この状態で、通常RNAの沈殿は見えない。
*12) RNAの沈殿は、ゲル様のペレットとしてチューブの内壁と底に付着する。
*13) この状態で４°Cで少なくとも１週間、－20°Cであれば１年間は保存することができる。
*14) もしRNAの沈殿がチューブの内壁から流れ出しそうな状態の場合は、エタノール洗浄
後の遠心は 12K×g にて行なう。
*15) RNAの沈殿は、風乾または５～10分間真空乾燥する。真空遠心機を用いて乾燥しては7

いけない。沈殿を完全に乾燥してしまうと溶解性が著しく減少する。溶解性が減少したRNAの OD260／OD280 は、1.6以下なので目安となる。得られたRNAは、滅菌蒸留水、TE（pH8.0）
または0.5％SDS にピペットチップで吸出して溶解し、55～60℃にて10～15分間保温するとよい。溶解する蒸留水、0.5％SDSは、予めジエチルピロカーボネート（DEPC）処理によってRNaseフリーにしておくか、RNaseフリーグレードの市販品を用いること。また、TE（pH8.0）を使用する場合は、RNaseフリーグレードの市販品を用いること（TEに含まれる
Tris-HClは、DEPC処理にて分解してしまう為）。
*16) 得られたRNAをアガロースゲル電気泳動すると、主に約2 kb と5 kbのリボソーム
RNAのバンドの他に0.1～0.3 kbの低分子RNAと、7～15 kbの高分子RNAを観察することができる。得られたRNAの OD260／OD280 は、1.6～1.8である。
OD260／OD280 を測定する際は、pH＞7.5の水もしくは buffer に溶解して測定する７）。

8［プロトコール１－３

植物試料からのRNA単離］

試料が植物の場合には［プロトコール１－１］を若干変えることにより、total RNAを得る
ことができる。
以下は植物試料（Arabidopsis または Tobacco）を用いた場合の例である。RNaseのコンタミを防ぐとともに安全のために手袋を着用し、清潔な環境で操作を行う。なお、クロロホル
ム、イソプロパノール及びエタノールは別に準備しなければならない。また、チューブは透明なポリプロピレン製を用いるとよい。
サンプル *1) 1～3 g fresh weight tissue
液体窒素中で試料を凍結し、乳鉢と乳棒ですりつぶす
粉砕したパウダー状の凍結サンプル *2)
50℃に保温しておいた10 ml ISOGEN／g fresh weight tissue *3)
ボルテックスミキサーで30秒間混合
50℃で10分間インキュベート *4)
室温 5分間放置 *5)
0.2 ml クロロホルム *6)／1 ml ISOGEN
激しくシェイクして混合
室温 2分間放置
遠心（10,000×g, 15分間, 4°C） *7)
DNA及びタンパク質を単離する場合［プロトコール2、3］*8)中間相と有機相を4℃で保存

水相を新しいチューブに移す *9)
0.5 ml 4M LiCl *10)／0.5 ml 水相
混合－70°C １時間放置 *11)
遠心（12,000×g, 15分間, 4°C）
沈

殿 *12)
0.4 ml RNaseフリー水
溶解0.4 ml イソプロパノール
混合
4°C 30分間放置
遠心（12,000×g, 15分間, 4°C）

沈殿
1 ml 70%エタノール
ボルテックスミキサーで混合
遠心（12,000×g, 15分間, 4°C）

沈殿
風乾 *13)9

0.4 ml RNaseフリー水
溶解40 μl 3M sodium acetate
1 ml エタノール
混合－70°C １時間放置
遠心（12,000×g, 15分間, 4°C）
沈殿
1 ml 70%エタノール
ボルテックスミキサーで混合
遠心（12,000×g, 15分間, 4°C）

沈殿

風乾 *13)
0.4 ml RNaseフリー水
溶解
total RNA 溶液 *14)

弊社では、植物試料を用いた場合のRNAの収量は、Arabidopsis または Tobacco 0.5～1 g fresh
weight より150～200 μg (OD260/OD280≒1.8)という結果が得られた。
*1) できるだけ新鮮な試料を用いる。
*2) 液体窒素にて凍結し粉砕した後、凍らせたままにしておく。
*3) 予め遠心管にISOGEN（10～20 ml／g fresh weight tissue）を入れて50℃に保温しておき、その中に*2）の試料を入れる。
*4) インキュベート時間は10分間または試料が完全に溶けるまでとする。インキュベート
時間が長すぎるとポリサッカライドのコンタミが多くなるので注意する。
*5) この状態で－70℃で少なくとも１か月は保存できる。 *3）で使用した遠心管が高回転（12K×g）で遠心できないものである場合には、この時点で、試料を加えてインキュベー
トしたISOGEN混合液をマイクロチューブに１mlずつ分注してからクロロホルム処理をすると、以後の処理がしやすい。
*6) イソアミルアルコールの添加されたクロロホルム（CIAなど）は使用できない。クロロホルムの量はISOGENの１／５容量とする。
*7) ホモジネートは、遠心分離により下層の有機相、中間相及び上層の水相に分かれる。
RNAは水相に含まれるが、この水相にはDNAやタンパク質はほとんど含まれない。この時の水相の体積は、加えたISOGENの体積の約60％である。

10*8) ここで得られた中間相と有機相は、それぞれDNA及びタンパク質を単離するため、一晩であれば４℃、数か月であれば－70℃にて保存する。ただし、中間相や有機相中に多量の不溶物（カス状、繊維状のもの等）がある場合、DNA及びタンパク質の単離には適さない。
*9) DNAやタンパク質との夾雑を少なくすることによりRNAの回収率を上げるため、有機相や中間相ができるだけ混入しないように、水相を新しいチューブに移して、以下の操作を行なう。チューブには１本当たり水相 500 μlを入れる。
*10) 水相に塩化リチウムを加えると白濁がおこる。
*11) 液体窒素を使用する場合には15分間静置する。
*12) 沈殿は無色透明でゼリー状の柔らかい沈殿と白色の沈殿にわかれる。この時にゼリー状の沈殿をできるだけ除去する。
*13) RNAの沈殿は風乾または５～10分間真空乾燥する。真空遠心機を用いて乾燥してはいけない。沈殿を完全に乾燥してしまうと溶解性が著しく減少する。溶解性が減少した RNAの OD260/OD280 は1.6以下なので目安となる。
*14) 得られた total RNA solution をすぐに使用しない場合、1／10容量の3Ｍ 酢酸ナトリウ
ム、2.5倍量のエタノールを加えて－80℃保存する。使用時には 10K×gで15分間遠心し、得られた沈殿を70％エタノールで洗浄後乾燥し、滅菌蒸留水に溶かす。
OD260/OD280 を測定する際は、pH＞7.5の水もしくは buffer に溶解して測定する７）。

プロトコール 1-1、1-2、1-3 における収量の目安は次の通りである。
サンプル

収量

tissueliver
spleenkidneyskeletal muscle
brainplacenta

6-10 μg RNA/mg tissue6-10 μg RNA/mg tissue
3-4 μg RNA/mg tissue1-1.5 μg RNA/mg tissue1-1.5 μg RNA/mg tissue
1-4 μg RNA/mg tissue

微量組織

ラット下垂体またはヒト肝針生検材料

4-8 μg RNA/1-5 mg tissue

plant tissue

Arabidopsis or Tobacco

150-200 μg RNA/0.5-1 g fresh weight tissue

cultured cells

epithelial cells
fibroblasts

8-15 μg RNA/106 cells
5-7 μg RNA/106 cells

blood(human or animal)

7-15 μg RNA/ml blood11

【トラブルシューティング】
トラブル

対 策

低収量

・ ISOGENまたはISOGEN-LS添加後の溶解（またはホモジナイゼー
ション）を十分に行う。
・ 得られたRNA沈殿を十分溶解する。

OD260/OD280<1.65

・ 試料に加えるISOGENまたはISOGEN-LS量を増やす。この場合、後の操作は加えたISOGENまたはISOGEN-LS量に比例して増やす。
・ ISOGENまたはISOGEN-LSによる溶解（またはホモジナイゼーシ
ョン）後、室温で5分置かず、直ちにクロロホルムを加える。
・ 水相を採取する際、フェノール相を絶対に混入させない。
・ 得られたRNA沈殿を十分溶解する。
・ 試料にクロロホルムを加える前に12K×gで５分間遠心し、沈殿物を除去した後にクロロホルムを加える。
・ pH＞7.5 の水もしくは buffer に溶解して測定することにより、再現性のある値が得られる。

RNAの分解・・・・DNAのコンタミ

・ 試料に加えるISOGENまたはISOGEN-LS量を増やす。この場合、後の操作は加えたISOGENまたはISOGEN-LS量に比例して増やす。
・ 得られたRNA溶液にDNAのコンタミが認められる場合には、この溶液（～100 μl）にISOGEN 1 mlまたはISOGEN-LS 0.75 mlを加え、再度処理を行う。
・ エタノールやDMSO等の有機溶媒、強緩衝液、アルカリ性溶液を含む試料を用いない。

新鮮な試料を用いる。
細胞の場合、トリプシン消化により十分分散する。
用いる溶液や容器は、加熱処理を十分行う。
アガロースゲル電気泳動の際、用いるホルムアルデヒドの pHが、中性であることを確認する（pH 3.5以下だと分解が起こる）。

12

３．DNA の単離DNAは［プロトコール１－１、１－２、１－３］のホモジナイゼーション後の遠心分離で得られる中間相と有機相より回収する。単離されたDNAは、PCRや制限酵素の基質として用いることができる。
ただし、［プロトコール１－１、１－２、１－３］で得られた中間相や有機相中に多量の不溶物（カス状、繊維状のもの等）がある場合、得られるDNAの収量が少ない、あるいは純度が低いことがあるのでDNAの単離には適さない。

［プロトコール２

DNAの単離］以下の操作は、安全のために手袋を着用して行う。なお、エタノール及びくえん酸ナトリ
ウムは別に準備しなければならない。［プロトコール２］は、前述の［プロトコール１－
１］で ISOGEN 1 ml または ISOGEN-LS 0.75 ml 用いた場合に対応する。
中間相と有機相 ［プロトコール1－1］*1)

0.3 ml エタノール
転倒混和
室温 2～3分間放置
遠心（2,000×g, 5分間, 4°C）
タンパク質を単離する場合［プロトコール３］
上清を保存

沈

殿
1 mlくえん酸ナトリウム in 10%エタノール *2)
室温 30分間放置 (ときおり混和する)

*3)

once

遠心（2,000×g, 5分間, 4°C）
沈殿
2 ml 70%エタノール
室温 10～20分間放置 (ときおり混和する) *4)
遠心（2,000×g, 5分間, 4°C）

沈殿
風乾 *5)
DNaseフリー水または TE (pH8.0)

溶解 *6)DNA 溶液 *7)

13*1) 純度の高いDNAを得るには、残存する水相を注意深く完全に除去しなければならない。
中間相と有機相は4°Cで一晩保存してもよい。
*2) 0.1M くえん酸ナトリウム in エタノール調製方法：
1M くえん酸ナトリウム 10 ml及びエタノール 10 mlに 100 mlになるように滅菌蒸留水を加え、混合する。
（1M くえん酸ナトリウム調製方法：
くえん酸三ナトリウム二水和物 29.4 gを蒸留水にて溶解し、100 mlにメスアップし、
オートクレーブで 121°C, 20分滅菌する。）*3) 洗浄の時間を短縮してはいけない。DNA量が 200 μg以上のときや、DNA以外の成分が非常に多いときは、さらに洗浄を行う。
*4) この状態で４°Cで数か月保存することができる。
*5) ５～10分間真空乾燥させる。完全に乾燥させるとDNAの溶解が著しく困難になる。
*6) ピペットにて穏やかに吸出して溶解する。この段階で、特に組織よりDNAを単離した場合に、さらに不溶性のゲル様の物質が含まれていることがある。その時は、遠心分離（12K×g, 10 min）により除去する。不溶性物質をさらに溶解したい場合には最終濃度 8 mM
NaOH を加えることにより、効果が得られることがある。また、この状態で4°Cで一晩保存することができるが、長期間保存するときはTE（pH 8.0）で溶解した場合はそのまま、滅菌
蒸留水で溶解した場合はTris-HCl（pH 8.0）を最終濃度 10 mM、EDTAを最終濃度 1 mMになるように加える。NaOHで溶解した場合はHEPESで下記の表を参考にして pH を７～８に調製し、EDTAを最終濃度 1 mMになるように加える。
*7) この時に不溶沈殿物が認められる。さらに純度を高めたい場合にはフェノール／クロロホルム処理をしてもよい。ただし、この場合には収量が下がることがある。
［プロトコール２］に従ってDNAを単離すると、細胞の場合は60～100 kbのDNAが約70％、～20 kbのDNAが約30％、培養細胞の場合は 60～100 kbのDNAが約80％、～20 kbのDNAが約20％得られる。しかし、DNAの平均長は、ホモジナイゼーション中のせん断力の強さに依存するので、大きなDNA断片を得たいときにはポリトロンホモジナイザーのような強力なものを避ける。得られたDNA溶液は、水で希釈して OD260 を測定して収量を計算する。
1 OD260 = 50 μg dsDNA/ml である。収量の目安は、106 個のヒト、ラット、マウス細胞でそれぞれ 7.1 μg、6.5 μg、5.8 μgである。得られるDNAは、RNA及びタンパク質をほとんど含
まず、OD260/OD280 は1.7以上である。PCRや制限酵素の基質として用いる場合、滅菌蒸留水
またはTE（pH 8.0）で溶解した時にはそのまま使用できるが、終濃度 8 mM NaOHで溶解した時は予め pH を HEPES 添加または透析による調整が必要である。HEPESによる調整は下記の表を参考にするとよい。この方法で得たDNAは、1 μg当たり3～5 unitsの制限酵素により、3～24時間でその80～90％を切断することができる。
OD260／OD280 を測定する際は、pH＞7.5の水もしくは buffer に溶解して測定する７）。

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final pH
8.4
8.2
8.0
7.8
7.5
7.2
7.0

required HEPES
concentration (M)
0.1
0.1
0.1
0.1
0.1
1
1

required HEPES volume(μl/ml 8 mM NaOH)
86
93
101
117
159
23
32

プロトコール 2 における収量の目安は次の通りである。
サンプル

tissues

収量

liver
kidneyskeletal muscles
brain
placenta

cultured cells (human, rat and mouse)

3-4 μg DNA/mg tissue
3-4 μg DNA/mg tissue
2-3 μg DNA/mg tissue
2-3 μg DNA/mg tissue
2-3 μg DNA/mg tissue
5-7 μg DNA/106 cells15【トラブルシューティング】
トラブル

対 策

低収量

・ ISOGENまたはISOGEN-LS添加後の溶解（またはホモジナイゼーション）を十分に行う。
・ 得られたDNA沈殿を十分溶解する。
・ 得られたDNA溶液に不溶沈殿物が認められる場合は、不溶沈
殿物をピペットの先等でくずし、 55°Cにて 20分保温した後遠心し、得られた上清を使用する。

OD260/OD280<1.70

・ 0.1M くえん酸ナトリウム in 10％エタノールによるDNA洗浄をもう一度行い、完全にフェノールを除去する。または、DNAをピペットでよくほぐした溶液を遠心し、上清をクロロホルム処理することもできるが、この場合には回収率が下がることがある。
・ pH＞7.5の水もしくは buffer に溶解して測定することにより、再現性のある値が得られる７）。

DNAの分解・ 新鮮な試料を用いる。
・ 試料をポリトロン等の高スピードホモジナイザーを用いてホモジナイゼーションすることは避ける。

RNAのコンタミ

・ RNA単離の際の水相を完全に除去する。
・ 0.1M くえん酸ナトリウム in 10％エタノールによるDNA洗浄を十分行う。

不溶沈殿物が出る・ 抽出したDNAを滅菌蒸留水またはTE（pH 8.0）で懸濁した際に不溶沈殿物が認められるが、この場合には遠心して上清を用いる。上清から得られるDNAの収量が少ない場合には終濃度8 mM水酸化ナトリウムを加えてもよい。水酸化ナトリウムを加えて懸濁することにより、不溶沈殿物が溶けやすくなることがある。さらに純度を高めたいときには、フェノール／クロロホルム処理を行なう。ただし、この場合には収量が下がることがある。

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４．タンパク質の単離タンパク質は、［プロトコール２］のエタノール沈殿の遠心分離で得られる上清の有機相より回収する。単離されたタンパク質は、そのままウエスタンブロッティングに用いることができる。

［プロトコール３タンパク質の単離］以下の操作は、安全のために手袋を着用して行う。なお、塩酸グアニジン、SDS、エタノー
ル及びイソプロパノールは別に準備しなければならない。［プロトコール３］は、［プロトコール１－１］でISOGEN 1 mlまたは ISOGEN-LS 0.75 mlを用いた場合に対応する。
上清 [プロトコール２]*1)

1.5 ml イソプロパノール
室温 10分間放置
遠心（12,000×g, 10分間, 4°C）
沈殿
1 ml 0.3M guanidine hydrochloride in 95%エタノール *2)
室温 20分間放置

twice

遠心（7,500×g, 5分間, 4°C）
沈殿
2 ml エタノール *2)
室温 20分間放置
遠心（7,500×g, 5分間, 4°C）

沈殿
風乾 *3)
1% SDS
溶解 *4)

protein solution *5)

17*1) プロトコールに従えば上清の量は約0.8 mlである。0.1％SDSにて4°Cで透析すると、収量が上がることがある。
*2) この状態で4°Cで少なくとも１か月あるいは、－20°Cで少なくとも１年間保存できる。
*3) ５～10分間、真空乾燥させる。
*4) タンパク質の効果的な回収の為に以下の３通りの方法がある。
A) ペレットをピペッティングにより1％SDSに溶解し、50°Cで保温する。ペレットには溶解しないものも含まれているので遠心分離（10K×g, 10 min, 4°C）により除去する。
B) ペレットを10M urea／50 mM DTTに針でくずして溶解する（urea／DTT溶液は新鮮なものを用いる）。室温で１時間放置し、３分間煮沸する。氷冷し、sonicateする。
溶解しない場合は、溶解するまで煮沸とsonicateをさらに２回行う８）。
C) *1）のフェノール／エタノールの上清を0.1％SDSにて４°Cで透析する。
*5) 不溶物は遠心分離（10K×g, 10 min, 4°C）により除去する。得られたタンパク質はそのままウエスタンブロッティングに使用できる。また、－20°Cで保存できる。

【トラブルシューティング】
トラブル

対策

低収量

・ ISOGENまたはISOGEN-LS添加後の溶解（またはホモジナ
イゼーション）を十分に行う。
・ 得られたタンパク質沈殿を十分溶解する。

タンパク質の分解

・ 新鮮な試料を用いる。

PAGEでのバンドディフォ
ーメーション・ タンパク質沈殿の洗浄を十分に行う。

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5．参考文献

1) Chomczynski P and Sacchi N (1987) Single step method of RNA isolation by acid guanidinium
thiocyanatephenol-chloroform extraction. Anal Biochem,162, 156-159.
2) Chomczynski P (1993) A reagent for the single-step simultaneous isolation of RNA, DNA andproteins from cell and tissue samples. BioTechniques,15, 532-537.
3) Chomczynski, P., Bowser-Finn, R. and Sabatini, M. L. (1994) J. NIH Res., 6, 83
4) Chomczynski P and Mackey K (1995) Modification of the TRI Reagent procedure for isolationof RNA from polysaccharide - and proteoglycan - rich sources. Biotechniques,19, 942-945.
5) Mackey K and Chomczynski P (1996) Long-term stability of RNA isolation reagents. THE
JOURNAL OF NIH RESEARCH, 8, 72.
6) Ausubel F M, Brent R, Kingston R E, Moore D D, Seidman J G, Smith J A and Struhl K (1990)
Appendix 1, in Current Protocols in Molecular Biology, vol 2, p. A.1.5, John Wiley and Sons,
Inc., New York, NY.
7) Wilfinger W, Mackey K and Chomczynski P (1997) Effect of pH and ionic strength on the
spectrophotometric assessment of nucleic acid purity. BioTechniques, 22, 474-481.
8) Varela L and Margot Ip (1996) A multifunctional regulator of mammary gland development.
Endocrinology. 137(11), 4915-4924.

マニュアル記載内容に関しては予告なしに変更する場合があります。

株式会社ニッポンジーン
研究試薬部 学術営業課
TEL 076-451-6548
URL http://www.nippongene.com/
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ISOGEN, ISOGEN-LS Manual Ver. 3rd 20110921-1803

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