59

実験コストダウンをアトーの高性能・高品質試薬で！

☻ 低コスト、インヒビター付

WSE-7420 EzRIPA Lysis kit
動物細胞および組織から全タンパク質を抽出するための RIPA 可溶化バッファー☻ 超遠心は不要です！

WSE-7421 EzSubcell Extract
動物細胞から細胞質・膜・核・不溶性タンパク質を分離して抽出☻ PBS buffer もご用意！

WSE-7430 EzPBS(-)

リン酸緩衝生理食塩溶液（滅菌済）☻ 活性保持してタンパク質抽出

WSE-7424 EzProteoLysisi Native細胞および組織から活性を損なわずタンパク質を抽出する可溶化バッファー☻ 核とミトコンドリアを分画！

WSE-7422 EzSubcell Fraction
動物細胞から核・ミトコンドリア・
細胞質を分画☻ 大腸菌や酵母から！

WSE-7423 EzBactYeastCrusher
大腸菌や酵母からタンパク質を簡単・短時間に抽出

2023年9月度 価格改定版

細胞および組織から分画・抽出アプローチを変えて新しい発見へ！
タンパク質の局在・輸送、創薬ターゲットの探索、ストレス応答、エピジェネティクス解析、
シグナルパスウェイ解析、などの研究にIntroduction

一方で、細胞全体には非常に多くのタンパク質が存在

細胞内のタンパク質には細胞質や核、ミトコンドリアなどある特定の領域に局在するものがあります。これらのタンパク質は、刺激に対する応答や細胞周期などの影響を受けて局在が変化し、さらに活性化／不活性化したり、機能が変化する場合などもあります。このようなタンパク質の局在や輸送を調べることは、タン
パク質の機能を知る上で重要な情報の一つとなっていするため、ターゲットタンパク質の同定や単離・精製が難しい場合があります。このような場合、細胞を細胞小器官ごとに分けて解析することで、タンパク質の種類が少なくなり、バックグラウンドの影響も受けにくくなるため、ターゲットタンパク質の同定・機能解
析をより簡単に行うことができます。
例えば・・・オルガネラを分離するとターゲットが見つかりやすくなりますます。
例えば・・・タンパク質の局在と輸送の解析ができます
細胞質

核

膜

細胞質

二次元電気泳動で見えにくかったスポットがオルガネラを分離する＝試料をセレクトすることでターゲットが見つかりやすくなります核

例えば・・・クロマチン免疫沈降（ChIP）アッセイなどの核タンパク質の調整が簡単です
細胞質

核

膜

核

核タンパク質ターゲットタンパク質が WB の結果により細胞質から核へ移動しているのがわかりますDNA
免沈へ・・・

イージーリパ ライシス キット

イージーサブセル エキストラクト

WSE-7420 EzRIPA Lysis kit

WSE-7421 EzSubcell Extract

WSE-7422 EzSubcell Fraction

細胞の全タンパク質の抽出液です。

細胞小器官（細胞質・膜分画・核・不溶性タンパク質）を抽出する試薬です。混ぜて遠心するだけで各細胞小器官の抽出液が調整できます。

細胞小器官（ミトコンドリア・核・細胞質）を分画する試薬です。各細胞小器官は膜を傷つけることなく調整できます。

プロテアーゼインヒビターとホス
ファターゼインヒビターが添付されています。

イージープロテオライシスネイティブ１

イージーサブセル フラクション

イージーピービーエス

WSE-7424 EzProteoLysis Native

WSE-7430 EzPBS(-)

細胞の全タンパク質の抽出液です。機能・細胞実験用の滅菌済緩衝液です。

活性を損なわずにタンパク質を抽出しま

Ca++、Mg++ を含まないリン酸

す。プロテアーゼインヒビターとホスファ

緩衝生理食塩溶液です。

ターゼインヒビターが添付されています。

大腸菌や酵母からタンパク質を抽出より簡単・確実に効率 UP へ！
大腸菌や酵母からタンパク質を簡単・短時間に抽出する溶液キットです。
発現タンパク質の精製・確認、電気泳動やブロッテイングなどいろんな用途に利用いただけます。
イージーバクトイーストクラッシャー

WSE-7423 EzBactYeastCrusher

大腸菌

BactYeast
Lysis buf.

大腸菌や酵母からの全タンパク質の抽出液です。短時間で調製可能です。プロテ
アーゼインヒビターと DNase が添付されています。

遠心
10 min（室温）

遠心上清回収

Luciferase activity

活性測定

80000

電気泳動

70000
60000

RLU

50000

発現
タンパク質 ⇒

40000
30000
20000
10000
0

ATTO

Extracted protein

目

競合M

競合S

Purified protein

次

RIPA バッファー（タンパク質抽出バッファー）
イージーリパ ライシス キット

WSE-7420 EzRIPA Lysis kit ・・・・・・・・・・・・・・・・・・ ３タンパク質抽出試薬

イージープロテオライシｓネイティブ

WSE-7424 EzProteoLysis Native ・・・・・・・・・・・・・・・・・・ ４
PBS バッファー（リン酸生理食塩バッファー）
イージーピービーエス

WSE-7430 EzPBS(-)・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・ 4
オルガネラ（細胞質・膜分画・核・不溶性タンパク質）分画抽出キット
イージーサブセル エキストラクト

WSE-7421 EzSubcell Extract・・・・・・・・・・・・・・・・・・ ５
オルガネラ（ミトコンドリア・核・細胞質）分画抽出キット
イージーサブセル フラクション

WSE-7422 EzSubcell Fraction・・・・・・・・・・・・・・・・・・・ ７
大腸菌・酵母タンパク質抽出キット

イージーバクトイーストクラッシャー

WSE-7423 EzBactYeastCrusher・・・・・・・・・・・・・・・・・・ ９
操作・データ「組織・細胞・菌からのタンパク質抽出方法」
アプリケーションノート

Application Note・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・ 11
２

動物培養細胞および組織からの全タンパク質抽出溶液キット

WSE-7420 EzRIPA Lysis kit （イージーリパ ライシス キット）

動物細胞および組織から全タンパク質を抽出するための RIPA 可溶化バッファーです。
✔

電気泳動・免疫沈降・ELISA・酵素活性実験等のサンプル調整に✔

プロテアーゼインヒビターとホスファターゼインヒビターが添付✔

アミノ基、リン酸基のない HEPES バッファーのためにラベル（標識）
実験にも使用可能✔

１時間以内で操作終了✔

１回約￥108 の低コスト※組織は要ホジェナイズ

WSE-7420 EzRIPA Lysis kit

仕様など
WSE-7420 EzRIPA Lysis kit (2332336)① EzRIPA Lysis buffer: 100mL

20mMHEPES(pH7.5)、1%IGEPAL® CA630、0.1%SDS、
0.5% デオキシコール酸ナトリウム、150mM 塩化ナトリウム

キ ッ ト 内 容

② Protease inhibitor (100x): 1mL

アプロチニン、ペプスタチン A、ロイペプチン③ Phosphatase inhibitor (100x): 1mL

フッ化ナトリウム、βグリセロリン酸ナトリウム、活性型オルトバナジン酸 (V) ナトリウム容量100 サンプル分

サンプル容量1 サンプル :~ ２× 107 細胞 ( φ 10cm ディッシュコンフルエント )50 ～ 100mg

保存

冷蔵、インヒビターは -20℃（輸送時冷蔵可）、 １年間

価

格12,800 円※ IGEPAL® CA630

は NonidetP-40 と同等品。Rhone-Poulenc AG Co. の商標登録です。

操作概要

データ例

動物（培養）細胞組織

Inhibitor を加えた RIPA Lysis buffer を添加
ホモジェナイズ
氷上で 15 分間インキュベーション

実験例１

EzRIPA Lysis kit により調整した細胞抽出液の IP/WB

さらにウェスタンブロッティング（WB）にレーン 1 は全細胞抽出液、レーン 2 は COX
IV 抗体により免疫沈降したサンプル、レーン
3 は LSD １抗体により免疫沈降したサンプルである。

上清（抽出タンパク質）沈殿＊組織（50 ～ 100mg）は、ハサミ等で細断後ホモジェナイズします。

３

2

3

出液を COX IV 抗体により免疫沈降（IP）し、より同抗体を使用して COX IV を検出した。

回収して遠心1

EzRIPA Lysis kit により抽出した Hela 細胞抽＊は免疫沈降で使用した抗体由来のバンドを示している。

＊ 13 頁 Application Note も参照ください

114
85
47
31
26
17

*
*

COX IV構造・活性を損なわずにタンパク質を抽出

全タンパク質抽出溶液キット

WSE-7424 EzProteoLysis Native （イージープロテオライシス ネイティブ）

動植物細胞および組織から全タンパク質を抽出するための可溶化バッファーです。
✔

タンパク質の構造・活性を損なわずに抽出✔

各種 Native 電気泳動・免疫沈降・ELISA・酵素活性実験等のサンプル調製に✔

プロテアーゼインヒビターとホスファターゼインヒビターが添付✔

溶液混合後、静置→遠心→上清回収するだけの簡単操作✔

30 分以内で操作終了※※※組織は要ホジェナイズ

WSE-7424 EzProteoLysis Native仕様など

WSE-7424 EzProteoLysis Native (2332319)
キ ッ ト 内 容

① EzProteoLysis Native: 30mL グリセリン、界面活性剤② Protease inhibitor (100x): 0.3mL アプロチニン、ペプスタチン A、ロイペプチン、DMSO③ Phosphatase inhibitor (100x): 0.3mL
フッ化ナトリウム、βグリセロリン酸ナトリウム、活性型オルトバナジン酸 (V) ナトリウム容量30 サンプル分

サンプル容量1 サンプル :5 × 106~ ２× 107 細胞 ( φ 10cm ディッシュコンフルエント )50 ～ 100mg 組織保存

冷蔵、インヒビターは -20℃（輸送時冷蔵可）、 １年間

価

格20,800 円細胞を扱う実験にPBS(-) リン酸緩衝生理食塩溶液
WSE-7430 EzPBS(-) （イージーピービーエス）

細胞調製などに使用する一般的な PBS バッファーです。
✔

細胞を扱う実験、ELISA・免疫組織染色・ウエスタンブロッティング等に✔

滅菌済、DNase Free✔

カルシウム、マグネシウムを含みません✔

10 倍濃縮溶液

希釈時に Tween や EDTA 等を加えて調製可能

仕様など
WSE-7430 EzPBS (2332380)

WSE-7430 EzPBS(-)

内容

10× PBS(-) pH7.4
終濃度（1.76mMKH2PO4、10mMNa2HPO4･12H2O、2.7mMKCl、137mMNaCl）

容

量

１L

保

存

室温

価

格

7,800 円４

動物細胞からのオルガネラ分画・抽出キット

WSE-7421 EzSubcell Extract （イージーサブセル エキストラクト）

動物細胞から細胞質・膜・核・不溶性タンパク質を分離して抽出するための試薬キットです。
４．不溶性分画(主に細胞骨格）

WSE-7421 EzSubcell Extract

W. 全タンパク質 １．細胞質分画

２．膜分画

✔

タンパク質の局在と輸送・装薬ターゲットの探索・ストレス応答・エピジェネティクス解析などに✔

電気泳動・免疫沈降・ELISA・クロマチン免沈・酵素活性実験等のサンプル調整✔

１～４の抽出液を順番に混ぜて遠心するだけの簡単操作✔

必要な装置はマイクロチューブ用の冷却遠心機（~10,000 × g) だけ✔

全分画の抽出操作は 3 時間以内で終了✔

動物組織から回収した細胞や凍結保存した細胞からも分離 OK

操作概要

仕様など

動物細胞

WSE-7421 EzSubcell Extract (2332337)＊

キ ッ ト 内 容

① Extraction buffer 1: 50 mL② Extraction buffer 2: 50 mL③ Extraction buffer 3: 25 mL④ Extraction buffer 4: 25 mL⑤ Protease inhibitor(100X): 1.25 mL⑥ DNase I: 0.25mL容

50 サンプル分

抽出液１を添加氷上で 10 分間インキュベーション
上清1．細胞質分画抽出液２を添加氷上で 30 分間インキュベーション
上清

2．膜分画

抽出液３を添加氷上で 60 分間インキュベーション
上清

3．核分画

抽出液４に溶解4．不溶性タンパク質（細胞骨格等）＊組織（50 ～ 100mg）は、ハサミ等で細断後トリプシン
処理などにより細胞に分散したものを使用します。植物はプ
ロトプラストであれば可能です。

５

３．核分画

量

サンプル容量1 サンプル :~ ２× 107 細胞( φ 10cm ディッシュコンフルエント *)50 ～ 100mg

保存①～③冷蔵、④室温、⑤⑥ -20℃
輸送時冷蔵可価

格48,800 円

１年間※細胞の種類・培地・環境などによって細胞数は異なります

データ例
W.
全タ
ンパ
1．
ク質
細胞
２． 質
膜
３．
核
４．
不溶
性

実験例１

オルガネラマーカータンパク質の発現SW480 細胞から抽出した各分画を、ウェスタンブロッティングにより解析した結果を示した。それぞれの分画に特異的なマーカータンパク質の発現が確認された。

細胞質
GAPDH

このように EzSubcell Extract は他のオルガネラタンパク質が混入することなく分離・抽出することができる。

ミトコンドリア
Cytochrome b
核
Lamin A/C

実験例２
クエン酸合成酵素活性（U/mL）

オルガネラ分画の酵素活性の確認
HeLa 細胞から抽出した各分画のクエン酸合成酵素活性を計測した結果を示した。クエン酸合成酵素はミトコンドリアに局在するタンパク質である。
2 の膜分画特異的に酵素活性が確認された。活性を保持したまま抽出可能なことを示している。

㊟

0.70
0.60
0.50
0.40
0.30
0.20
0.10
0.00

酵素によっては失活するものもあります。

実験例３

抽出液２で処理した遠心沈渣（核）のトリパンブルー染色像
Extraction buffer ２で処理した後の遠心沈渣をトリパンブルー染色して観察した結果である。核の形状に異常がなく、核膜が保持された状態で単離されていることが判る。この単離核はクロマチン免沈用のタンパク質の調整や、DNA の抽出等に使用できる。

HeLa 細胞の単離核

HEK293 細胞の単離核

Jurkat 細胞（浮遊）の単離核

表１

各抽出液のタンパク質濃度
EzSubcell Extract により、コンフルエントになった１枚の培養ディッシュ（φ 10cm、細胞数は 1~2 × 107 個）から各細胞株のオ
ルガネラ抽出液を調整した。Whole cell の抽出液は EzRIPA Lysis kit により、同様にコンフルエントの培養ディッシュ１枚から調整した。タンパク質濃度は BCA 法により定量した。
総タンパク量（mg）
Extract1

Extract2

Extract3

Extract4

HeLa

4.06

0.47

2.49

1.33

0.07

SW480

3.22

2.42

1.17

0.44

0.18

HEK293

3.33

2.82

1.73

1.01

0.54

細胞 Whole cell

アプリケーションノート 13 頁参照

動物培養細胞からの核＆ミトコンドリア分画単離キット

WSE-7422 EzSubcell Fraction（イージーサブセル フラクション）

動物細胞から核・ミトコンドリア・細胞質を分画するための試薬キットです。

WSE-7422 EzSubcell Fraction

核分画

ミトコンドリア分画

細胞質分画（その他のオルガネラを含む）✔

タンパク質の局在と輸送・装薬ターゲットの探索・ストレス応答・エピジェネティクス解析などに✔

電気泳動・免疫沈降・ELISA・クロマチン免沈・酵素活性・生理活性実験等のサンプル調整✔

再現性＆精製度の良いオルガネラ分画の簡単調整✔

必要な装置はマイクロチューブ用の冷却遠心機（~10,000 × g) だけ✔

全分画の分画操作は約２時間で終了✔

界面活性剤の使用・不使用が選択可能

操作概要

仕様など
WSE-7422 EzSubcell Fraction (2332338)

動物細胞
分画用溶液１を添加
氷上で 10 分間インキュベーション

キ ッ ト 内 容

① Fraction buffer 1: 50 mL② Fraction buffer 2: 50 mL③ RIPA Lysis buffer: 20 mL④ Detergent mix (50x): 1 mL
⑤ Protease inhibitor (100x): 0.7 mL容

50 サンプル分

ピペッティング / ホモジェナイズ
分画用溶液２を添加

核

上清

量

サンプル容量1 サンプル :~ ２× 107 細胞

保存冷蔵、④⑤は -20℃（輸送冷蔵可）、

価

格45,800 円( φ 10cm ディッシュコンフルエント *)１年間※細胞の種類・培地・環境などによって細胞数は異なります

ミトコンドリア

７

細胞質

データ例
実験例１

実験例２

核とミトコンドリアのトリパンブルー染色像

オルガネラマーカータンパク質の発現

HeLa 細胞から単離した核とミトコンドリアのトリパン

HeLa 細胞から抽出した各分画を、ウェスタンブロッティ

ブルー染色結果を示した。界面活性剤の使用・不使用にングにより解析した結果を示した。他オルガネラの若干の混入が認められたが、界面活性剤の使用・不使用に関関わらず、核とミトコンドリアが精製度よく形状を保持

わらず、それぞれの分画に特異的なマーカータンパク質した状態で単離されている様子が観察できる。
界面活性剤不使用の発現が確認された。

界面活性剤使用

界面活性剤不使用

界面活性剤使用核核

ミトコン
ドリア 細胞質

ミトコン
ドリア 細胞質核
LSD1
核

ミトコンドリア
Cytochrome b
細胞質
GAPDH

ミトコンドリア

界面活性剤は実験の用途により使い分けます。界面活性剤を使用すると細胞が均一壊れやすく、再現性よく分画できます。
分画したものを生理活性、膜電位実験などに使用する場合には、界面活性剤を使用しない方法で回収してください。

実験例３

様々な細胞からのオルガネラ分画
EzSubcell Fraction により様々な細胞株から、各オルガネラ分画を界面活性剤を添加した条件で分画し、トリパンブルー染色して観察した結果である。細胞の接着性に関わらず、浮遊細胞でも同様にオルガネラの形状を保持したまま分画できることを示している。また他オルガネラ分画のコンタミがほとんどないことが分かる。
HEK293 細胞

SW480 細胞Jurkat 細胞（浮遊）上段：単離した核分画
下段：単離したミトコンドリア分画

表１

各抽出液のタンパク質濃度
EzSubcell Fraction によりコンフルエントになった培養ディッシュ（φ 10cm）１枚から各細胞株のオルガネラ分画を調整した。
細胞数は 1~2 × 107 個であった。分画後のオルガネラと Whole cell の抽出液（コンフルエントの培養ディッシュ１枚分）はEzRIPA Lysis kit により調整した。タンパク質濃度は BCA 法により定量した。
総タンパク量（mg）
細胞 Whole cell

核

ミトコンドリア

細胞質

HeLa

4.06

1.19

0.81

4.75

SW480

3.22

0.69

1.17

2.53

HEK293

3.33

0.99

0.81

3.67

アプリケーションノート

11 頁参照大腸菌や酵母からのタンパク質抽出に大腸菌・酵母対象タンパク質抽出キット
WSE-7423 EzBactYeastCrusher（イージーバクトイーストクラッシャー）

大腸菌や酵母からタンパク質を抽出する溶液キットです。
Eas
Spe y !
Effi edy !!
cien
tly
!!!

大腸菌からの抽出
BactYeast
Lysis buf.

遠心

10 min（室温）●発現タンパク質の精製

WSE-7423 EzBactYeastCrusher✔

遠心上清回収

●免疫沈降

●酵素活性

●ウェスタンブロッティング ・・・などに

●電気泳動

簡単な操作
菌体と試薬溶液を混ぜて 10 分静置（可溶化）→遠心→上清回収

✔

短時間

✔

ガラスビーズ、ホモジェナイザー、破砕装置不要✔

酵素活性が阻害されにくい✔

DNase、 Protease inhibitor キットに付属✔

アミンを含まない → ラベル化実験に使用可能✔

カラム精製 （His、 GST 等のタグタンパク質） を阻害しない

30 分以内に調製終了

操作概要

仕様など
WSE-7423 EzBactYeastCrusher (2332339)

キ ッ ト 内 容

①BactYeastLysis buffer
100mL②Yeast PreLysis buffer
100mL③DNase1mL 1本④Protease inhibitor
1mL 1本

容

量

①②

量

50～100mg/サンプル

酵母
YeastPrelysis buffer を添加
室温で 5 分間静置
大腸菌

遠心

沈査

用

③④

各1mL

100サンプル分

BactYeastLysis buffer を添加

保存

Buffer ①②は室温、 ③④は -20℃

室温で 10 分間静置価

格16,800 円

遠心

遠心

上清
上清
（抽出タンパク質）（抽出タンパク質）

９

使各100mL、

1本
1本

１年間

データ例
大腸菌
実験例１

実験例２

回収率の比較

回収した酵素の活性の比較「EzBactYeastCrusher」および他社の試薬、一般的な方「EzBactYeastCrusher」および他社の試薬で抽出した大法で抽出した大腸菌タンパク質を電気泳動した結果です。

腸菌タンパク質（Luciferase発現株）のLuciferase活性を

全体的に十分な量が抽出されていることが確認できます。

測定した結果です。

S社

TO 社
AT
M

e
ym
z
S
so
Ly
SD

「EzBactYeastCrusher」は酵素活性が阻害されにくく、タ

ンパク質を安定化する組成になっています。

Luciferase activity
80000
70000
60000

RLU

50000
40000
30000
20000
10000
0

ATTO

M社
競合M

Extracted protein

大腸菌抽出タンパク質の泳動パターン

競合S
S社

Purified protein

大腸菌から抽出したrec. Luciferase 酵素活性

酵母
実験例３

実験例４

回収率の比較

免疫沈降への利用

酵母からのタンパク質抽出はガラスビーズ法などが一般「EzBactYeastCrusher」で抽出した酵母タンパク質から的ですが、本キットは集菌、洗浄後の酵母に[PreLysis

タグ抗体を使用してGFPを免疫沈降した結果です。抽出時

buffer][BactYeast Lysis buffer]を加えて静置後、遠心し上に5~10mMのDTTを添加しても免疫沈降にはほとんど影清を回収する簡単な操作です。収率も良く、30分以内で操響しないことを示しています。

作が終了します。

発現誘導
DTT

S社

T社

AT
TO

ガ
ビ ラ
ー ス
ズ
法

全体的に十分な量が抽出されていることが確認できます。

ー

＋

未誘導
ー

＊

＊

97.2
66.4

＊

45.0

rec.GFP →

29.0
20.1

＊

酵母発現rec.GFPの免疫沈降

14.3
kDa

酵母抽出タンパク質の泳動パターン

アプリケーションノート

＊：抗体由来バンド

11 頁参照Application Note

組織・細胞・菌からのタンパク質抽出方法
1．概要

2016 年 9 月 13 日

2-2．参考データ「Protein」の語源はギリシャ語の「Proteios（一番重要なもの）」に由来するそうです。たしかにタンパク質は生体の構造や機能を担うのに不可欠な存在だといえます。タンパク質の機能を調べるためには、まず生体サンプルからタンパク質を抽出して可溶化することが重要です。
今回は、アトーの製品を使用したタンパク質抽出方法に関してご紹介します。

実験例１：抽出効率

A C B L S A4 M

抽出タンパク質の酵素活性
6.E+06
5.E+06

Luc activity (RLU)

一般的な注意点としてタンパク質を抽出する際の一般的な注意点としては、①サンプルの選択（新鮮で目的の事象がとらえやすいサンプルを選択）、②温度（一般的には０～４℃）、③ pH、
イオン強度（一般的には pH 4 ～ 7、イオン強度は 0.1
M）、④チオール基（酸化を保護するための DTT 等の還元剤の添加）、⑤
安定化剤の添加（糖やグリセリン等の添加）、⑥プロテアーゼインヒビターの添加、⑦金属イオンのキレートなどがあげられます。

4.E+06
3.E+06
2.E+06
1.E+06
0.E+00A

２．大腸菌からのタンパク質抽出方法
大腸菌などの微生物には細胞壁があるため、哺乳類の細胞に比べて破壊するのが困難です。一般的には超音波破砕、凍結融解による破砕、
リソソームなどの酵素による溶解などによりタンパク質を抽出します。
しかし、超音波や凍結融解による物理的破砕は、操作が煩雑な上に、しばしばタンパク質が壊れる原因になります。アトーの EzBactYeast
Crusher は菌体に混ぜるだけでタンパク質を安定に抽出可能です。

2-1．実験方法
実験材料：

		
		
		
		

大腸菌および培養液 （10mL）

EzBactYeast Crusher （WSE-7423）
蒸留水
マイクロ遠心チューブ、チップ等
遠心機、ピペットマン等

抽出に使用した試薬
A: EzBactYeast Crusher (RT)
C: 他社市販試薬
B: 他社市販試薬
L: Lysozyme
S: SDSサンプルバッファー
A4: EzBactYeast Crusher (4℃)
M: EzProtein Ladder

菌体の溶解
遠心上清を捨て、菌体をボルテックスして細胞塊をよくほぐします（重要）。
0.5mL の EzBactYeast Lysis buffer を添加し、室温で 10 分間静置します。
※ EzBactYeast Lysis buffer に は あ ら か じ め
EzBactYeast Crusher キット添付の ProteaseS

A4

図はルシフェラーゼ発現大腸菌から図表に記載された試薬を使用してタンパク質を抽出し、電気泳動した結果（左）と酵素活性を測定した結果（右）を示しています。アトーの EzBactYeast Crusher は室温でも低温（4℃）でも同様に、他社市販試薬と同等以上の抽出効率でタンパク質を回収できます。
また上記グラフに示されたように、室温で抽出した場合でも、酵素活性を高く保持した状態でタンパク質が抽出可能なことが判ります。

M Ext FT W E1 E2

精製過程の酵素活性大腸菌を 2,000xg で 5 分間遠心して集菌します。遠心沈査に 5~10mL の蒸留水を加えて懸濁し、再度、2,000xg で 5 分間遠心して集菌します。
※洗浄後の遠心沈査（菌体）は -80℃で凍結保存可能です。一般的に、一度、凍結した方が抽出効率は上がります。

L

3.E+07

Luc activity (RLU)

集菌・洗浄

B

実験例２：発現タンパク質の精製

大腸菌培養
大 腸 菌 を 適 当 な 培 地 で O.D.600=0.5~1.0に な る ま で 培 養 し ま す（ 菌 体 量 と し て は50~100 mg 相当です）。
※大腸菌発現タンパク質を抽出する場合は、発現用大腸菌および発現タンパク質に適切な条件下で培養することを推奨します。

C

2.E+072.E+07LUC

1.E+07
5.E+06
0.E+00

Ext

FT

W

E1

E2

図 は His tag ‐ ル シ フ ェ ラ ー ゼ 発 現 大 腸菌 か ら EzBactYeast Crusher を 使 用 し て
抽 出 し た タ ン パ ク 質 を Ni-Sepharose
カラムで精製した結果を示しています。
EzBactYeast Crusher は、 カ ラ ム へ の 結合、各精製ステップの反応を阻害することなく、また酵素活性も保持した状態でタンパク質を精製できます。このように
EzBactYeast Crusher は、大腸菌系発現タ
ンパク質の抽出・精製にも適していることが示されました。

M: EzProtein Ladder
Ext: Whole Extract
FT: Flow through
W:Wash
E1: Extraction 1
E2: Extraction 2（Purified protein)

Inihibitor と DNase I を添加しておきます。
一般的な大腸菌タンパク質の抽出方法

タンパク質抽出
細胞溶解液を 10,000xg（4℃）で 5 分間遠
心し、遠心上清を回収します。
※不溶性タンパク質は遠心沈査に回収されます。不溶性タンパク質を抽出する際は、遠心沈渣に 8M 尿素含有緩衝液や 6M グアニジ
ン塩酸含有緩衝液などを添加して溶解し、タンパク質を抽出してください。

11

1. 大 腸 菌 を 破 砕 用 溶 液（50 mM Tris/pH8.0, 500 mM NaCl, 15%
glycerol, 10 mM imidazole）で 3 回洗浄する
2. 細胞塊を 3 倍容量の Sonication buffer に懸濁し、終濃度が 1 mg/
mL Lysozyme、1 mM DTT、0.5 mM EDTA になるように添加する。
3. 大腸菌が破砕されるまで、冷却しながら、超音波破砕を行う（顕鏡確認）
4. 終濃度が 0.1 mg/mL DNase I になるように添加する。
5. 遠心（10,000g ～ 25,000g × 10 ～ 30 分）して、上清を回収する。

3．酵母からのタンパク質抽出方法
酵母には多糖類を主成分とした硬質の細胞壁があるため、大腸菌よりも破壊するのが困難です。一般的にはガラスビーズなどの研磨剤を加えた
ホモジェナイズ、フレンチプレスなどの加圧減圧処理による破砕、超音
波破砕、ザイモリアーゼなどの酵素によりプロトプラスト化してからの溶解などが主流です。しかし、物理的破壊は抽出効率は高いものの、操作が煩雑で物理的ダメージが大きく、またプロトプラスト化も条件の至適化が難しいといわれています。アトーの EzBactYeast Crusher はプロ
テアーゼインヒビターと DNase I が付属されており、ガラスビーズ法に匹敵した抽出効率で、菌体に混ぜるだけでタンパク質を安定に抽出可能です（分裂酵母は抽出効率が下がります）。

		
		
		
		

実験例 3：酵母タンパク質抽出効率の比較
ガラス
ビーズ法
P

ザイモリ
前処理なし
前処理あり
エース処理
A C A C Y A C Y AD A C Y AD

245
180
140

3-1．実験方法
実験材料：

3-2．参考データ

菌体および培養液 （10mL）

EzBactYeast Crusher （WSE-7423）
蒸留水
マイクロ遠心チューブ、チップ等
遠心機、ピペットマン等

菌体の溶解

タンパク質抽出

35
25
20
15

(kDa)

酵 母 を 適 当 な 培 地 で O.D.600=0.5~1.0に な る ま で 培 養 し ま す（ 菌 体 量 と し て は50~100 mg 相当です）。
※発現タンパク質を抽出する場合は、発現用
酵母および発現タンパク質に適切な条件下で培養することを推奨します。

前処理

45

10

酵母培養

集菌・洗浄

100
75
60

酵母を 2,000xg で 5 分間遠心して集菌します。遠心沈査に 5~10mL の蒸留水を加えて懸濁し、再度、2,000xg で 5 分間遠心して集菌します。
※洗浄後の遠心沈査（菌体）は -80℃で凍結保存可能です。一般的に、一度、凍結した方が抽出効率は上がります。
遠心上清を捨て、菌体をボルテックスして細胞塊をよくほぐします（重要）。
0.5mL の Yeast PreLysis buffer を添加してボルテックスし、室温で５分間静置します。
※ 実 験 系 に 支 障 が な い 場 合 は、DTT を
5~50mM 添加するとタンパク質抽出効率が上がります。
細胞懸濁液を 10,000xg で 5 秒間（4℃）遠心し、回収した菌体をボルテックスにより細胞塊をよくほぐします（重要）。
0.5mL の EzBactYeast Lysis buffer を添加し、室温で 10 分間静置します。
※ EzBactYeast Lysis buffer に は あ ら か じ め
EzBactYeast Crusher キット添付の Protease
Inihibitor と DNase I を添加しておきます。
※抽出効率を上げる場合は、酸洗浄ガラス
ビーズ（φ 0.5 ｍｍ）を使用します（分裂酵母は必須）。

実験例 4：酵母抽出タンパク質の免疫沈降
A

245
180

B

C

抽出後のタンパク質をBlue LEDで検出した像

抗体

140
100
75
60
45
35
25
20

細胞溶解液を 10,000xg（4℃）で 5 分間遠
心し、遠心上清を回収します。

抽出に使用した試薬

P: PBS
図はYPD培地で培養した出芽酵母
A: EzBactYeast Crusher（Saccharomyces cerevisiae）5mL の培養液
C: 他社市販試薬
から細胞を回収し、記載の方法でタンパク質を抽 Y: 他社市販試薬
出して、電気泳動を行った結果を示しています。 AD: EzBactYeast Crusher＋5ｍM DTT
ガラスビーズ法は細胞の約２.5倍容量のガラスビーズと各抽出液を0.2ｍL 添加し、１０分間ボルテックスを行うことによりタンパク質を抽出しました。ザイモリエース処理法は5mg/mLのザイモリエー
スで３７℃で３０分間処理した後に、細胞をPBSで洗浄し、さらに細胞に各抽出液を0.2ｍL 添加して１０分間インキュベーションしてタンパク質を抽出しました。前処理なしおよび前処理ありは、細胞に各抽出液を0.2ｍL 添加して１０分間インキュベーションすることによりタンパク質を抽出しました。
前処理はタンパク質抽出前に、EzBactYeast Crusherに添付されたPre-Lysis
bufferを細胞に加えて１０分間インキュベーション処理しました。ガラスビ
ーズ法、ザイモリエース処理法を含め、EzBactYeast Crusherで抽出したレーン（A）のタンパク質は、その他の抽出試薬のレーンに比べてタンパク質バ
ンドが多く、濃度も濃いことが示されました。とくに溶出が困難な高分子領域のタンパク質の抽出効率が高く、様々なタンパク質が高効率に溶出できることが判ります。

15
10

発現誘導前

抗体（重鎖）
EGFP
抗体（軽鎖）

発現誘導後

A:発現誘導していない酵母抽出
タンパク質で免疫沈降
B:発現誘導した酵母抽出タン
パク質（DTTあり）から免
疫沈降
C:発現誘導した酵母抽出タン
パク質（DTTなし）から免
疫沈降

(kDa)

一般的な酵母タンパク質の抽出方法
1. 酵母を破砕用溶液（0.33M Sucrose, 0.3M Tris/pH8.0, 1mM EDTA,
1mM EGTA, 2mM DTT, 100mM 6-Aminohexanoic acid) で洗浄する。
2. 破砕容器に菌体を入れ、容器の 40％容量のガラスビーズ（酸洗浄済み）
を添加する。
3. ビーズ破砕機にセットし 1 分間のパルスで 3 ～ 5 分間破砕する。
4. 破砕後、必要であれば 1M Tris/pH7.4 を添加して pH 調整する。
5. 14,000g で 30 分間遠心して上清を回収する。

上図はV5 tag‐EGFP発現酵母からEzBactYeast Crusherを使用して抽出したタ
ンパク質を、V5抗体を使用して免疫沈降した結果を示しています。写真は抽出後のタンパク質をBlue LEDで励起してEGFPの蛍光をとらえた像です。
電気泳動パターンのレーンAは発現誘導していないため、EGFPのバンドは検出されていません。しかし発現誘導したレーンBとCには明瞭にEGFPのバンドが検出されました。またレーンBは還元剤であるDTT を添加した状態でタンパク質を抽出したため、免沈で使用した抗体由来のバンドも還元され重鎖（75kDa）と軽鎖（25kDa)に分かれています。一方、レーンAとCは還元剤を添加せずに抽出したため、抗体は還元されておらず、150kDaのバンドとして検出されました。このように、EzBactYeast Crusherを使用して抽出したタンパク質はタンパク質の変性が最小限に抑えられているため、コンプレックス（抗原サイトおよび抗体）が壊れることなく、また活性を保った状態（EGFP蛍光）であることが判ります。

4．動物細胞からの抽出方法
比較的柔らかい組織の場合 Potter 型ホモジェナイザーが、また大量の組織を取り扱う場合はワーリングブレンダーやミキサーなどが利用されています。もちろん微生物と同様に超音波破砕や凍結融解法による破砕も用いられます。また動物細胞には細胞壁がないため、浸透圧ショックにより細胞膜を破壊しオルガネラ等を分画する方法があります。ある種の酵素の抽出には有機溶媒（アセトン）による抽出法が利用されます。
その他、酵素や界面活性剤を利用した抽出方法も一般的によく用いられます。アトーの EzRIPA Lysis kit はプロテアーゼインヒビターとホスファ
ターゼインヒビターが付属されており、細胞に混ぜるだけでタンパク質を安定に抽出可能です。

4-1．実験方法
実験材料：
		
		
		
		

培養細胞 （10cm ディッシュ、5~20 × 106 細胞）

EzRIPA Lysis kit （WSE-7420）
EzPBS(-) （WSE-7430、10 ×濃度）

マイクロ遠心チューブ、チップ等
遠心機、ピペットマン等

細胞培養

5．オルガネラからの抽出方法
細胞内のタンパク質には細胞質や核、ミトコンドリアなどある特定の領域に局在するものがあります。これらのタンパク質は、刺激応答や細胞周期などの影響を受けて局在や機能が変化する場合があります。一方で、細胞全体には非常に多くのタンパク質が存在するため、ターゲットタン
パク質の同定や単離・精製が難しい場合があります。このような場合、細胞を細胞小器官ごとに分けて解析することで、タンパク質を絞りこむことができ、ターゲットタンパク質の同定や機能解析をより簡単に行う
ことが可能になります。アトーの EzSubcell Extract はプロテアーゼイ
ンヒビターと DNase I が付属されており、細胞に混ぜるだけで細胞質
分画、核分画、ミトコンドリアなどの膜分画、不要性分画それぞれを分離・抽出可能です。

5-1．実験方法
実験材料：
		
		
		
		

培養細胞 （10cm ディッシュ、5~20 × 106 細胞）

EzSubcell Extract （WSE-7421）
EzPBS(-) （WSE-7430、10 ×濃度）

マイクロ遠心チューブ、チップ等
遠心機、、ボルテックスミキサー、ピペットマン等

細胞培養

細胞を適当な培地でコンフルエントにな
6るまで培養します（5~20 × 10 細胞細胞を適当な培地でコンフルエントになるま
6で培養します（5~20 × 10 細胞相当）※使用する細胞によって、細胞の大きさや密度によって回収される細胞数は異なります。

相当）※使用する細胞によって、細胞の大きさや密度によって回収される細胞数は異な
ります。

細胞回収
洗浄

細胞の溶解

細胞を EzPBS(-) で 2 回洗浄します。
※ EzPBS(-) は使用前に蒸留水で 10 倍希釈して調整します。
※ 接 着 細 胞 は 剥 が さ ず に 洗 浄 し ま す。 浮
遊細胞はマイクロ遠心チューブに集菌し、EzPBS(-) に懸濁して洗浄します。
※洗浄後の細胞は ‐ 80℃で保存可能です。
1.0 mL の RIPA Lysis buffer を添加して氷上で 15 分間静置します。
※ RIPA Lysis buffer にはあらかじめ EzRIPA
Lysis buffer kit 添 付 の Protease Inihibitor

細胞を EzPBS(-) で洗浄し、トリプシン等で分散して回収します。回収後の細胞は、再度 EzPBS(-) で洗浄します。
※物理的破壊を避けるためスクレイパー
等でかきとらずに、細胞は分散して回収します。

トリプシン処理
細胞回収

細胞質の抽出と Phosphatase inhibitor を添加します。

※浮遊細胞は遠心沈渣に RIPA Lysis buffer（調整済み）を添加してピペッティングにより懸濁し、氷上に 15 分間静置します。

抽出液の回収細胞をスクレイパー等でかきとり、マイクロ
遠心チューブに回収します。
この細胞抽出液を 15,000xg で 5~15 分間（4℃）遠心します。

細胞質分画（Ext. 1)

膜分画の抽出※浮遊細胞も上記と同様に遠心します。

タンパク質回収

遠心上清を新しいマイクロ遠心チューブに回収します。可溶化したタンパク質溶液は使用時まで氷上で静置、もしくは－ 80℃で保存してください。
※核タンパク質も抽出する場合は、SDS を
最終濃度が 0.5％になるように添加すると
抽 出 効 率 が 上 が り ま す。DNA の 溶 出 に より粘性が上がるため、超音波破砕あるいは
DNase I で処理します。

一般的な動物細胞タンパク質の抽出方法
動物組織・細胞からタンパク質を抽出するためにはサンプルを破壊する必要があります。一般的に生体サンプルを破壊する方法としては①細断・摩砕（溶媒をサンプルの 3 ～ 10 倍添加してホモジェナイズする）、②超音波破砕（50mg/mL 以下の濃度で 1 ～ 10 分冷却しながら超音波をかける）、③凍結融解、④加圧破砕（フレンチプレスなどの）⑤浸透圧ショッ
ク（pH、イオン強度の変化）⑥有機溶媒（アセトン、アルコールにより脂質膜構造を破壊）⑦酵素処理（細胞壁の酵素破壊など）⑧界面活性剤の利用などがあげられます。

13

膜分画（Ext. 2)※ EzPBS(-) は使用前に蒸留水で 10 倍希
釈して調整します。
※浮遊細胞はマイクロ遠心チューブに集菌し、PBS(-) に懸濁して洗浄します。
※洗浄後の細胞は ‐ 80℃で保存可能です。
※凍結後の細胞からも抽出可能です。

細 胞 に 氷 冷 し た 1 mL の Extraction
buffer 1 を添加後、ボルテックスで混合し、4℃で 10 分間インキュベーションます。
700 × g で 5 分間（4℃）遠心し、遠心上清をマイクロ遠心チューブに回収します（細胞質分画）。

遠心沈渣に氷冷した 1 mL の Extraction
buffer 2 を添加後、ボルテックスで混合し、4℃で 30 分間インキュベーションます。
4,000 × g で 5 分間（4℃）遠心し、遠心上清をマイクロ遠心チューブに回収します（膜分画）。
※膜分画にはミトコンドリア、ゴルジ体、小胞体などが含まれます。

核分画の抽出核分画（Ext. 3)

遠 心 沈 渣 に 氷 冷 し た 0.5 mL のExtraction buffer 3 を添加後、ボルテッ
クスで混合し、4℃で 60 分間インキュ
ベーションます。
9,000 × g で 5 分間（4℃）遠心し、遠心上清をマイクロ遠心チューブに回収します（核分画）。

不溶性分画の抽出
不溶性分画（Ext. 4)

細 胞 に 室 温 の 0.5 mL の Extraction
buffer 4 を添加してボルテックスして溶解します。

5-2．参考データ

ReprobeTarget 2

Insoluble (Ext.4)

Nuclei (Ext.3)

Membrane (Ext.2)

Whole cell (RIPA)

Cytosol (Ext.1)

Insoluble (Ext.4)

Membrane (Ext.2)
Nuclei (Ext.3)

Cytosol (Ext.1)

Whole cell (RIPA)

Insoluble (Ext.4)

Nuclei (Ext.3)

Whole cell (RIPA)

Cytosol (Ext.1)
Membrane (Ext.2)

実験例５：核分画におけるオルガネラマーカーの検出

ReprobeTarget 3

Target 1

ミトコンドリア (Ext.2)
Cytochrome C

細胞質 (Ext.1)
GAPDH

核分画 (Ext.3)
Lamin A/C

ヒト結腸癌由来細胞 SW480（2 × 107 個細胞）から EzRIPA Lysis kit および EzSubcell Extract を使用して、全細胞（Whole cell)、細胞質（Cytosol, Ext.1)、膜分画（Membrane Ext.2)、核分画（Nuclei, Ext.3)、不溶性分画（Insoluble, Ext.4) のタンパク質を抽出し、EzApply を使用して電気泳動サンプルを調整しました。e-PAGEL（5-20% 濃度勾配ゲル）で分離し、EzFastBlot を使用してクリアブロット・P plus 膜に転写して、EzBlock CAS で 30 分ブロッキングしました。ブ
ロッキング後の膜をミトコンドリアマーカーの Cytochrome C 抗体、次いで HRP 標識２次抗体と反応し、EzWestLumi plus で検出した結果が上図左側の写真です。
全細胞抽出液と膜分画にのみバンドが検出されており、ミトコンドリアを含む膜分画が、他オルガネラのコンタミなく分離されていることが示されました。この
ブロッティング膜から EzReprobe との反応により抗体を剥離し、再び EzBlock CAS でブロッキングした後に、核マーカーの LaminA/C 抗体および HRP 標識２次抗体と反応して EzWestLumi plus で検出した結果が左から 2 番目の写真です。全細胞抽出液と核分画にのみバンドが検出されており、核分画もまた他オルガネラのコンタミなく分離されたことが判ります。再度、同様に抗体剥離、ブロッキングを行い、GAPDH 抗体と反応して検出した結果です。GAPDH は全細胞抽出液と細胞質分画にバンドが検出されましたが、膜分画にも検出されており、細胞質分画が膜分画にわずかに混在することが示されました。しかし、上述の実験では省きましたが、EzSubcell Extract によるオルガネラ分画の抽出法は、抽出時のさらなる洗浄操作を行うことにより、よりコンタミなく各オルガネラ分画を抽出することが可能です。このように EzSubcell Extract は各オルガネラ分画を細胞と混ぜるだけで抽出することができ、EzReprobe と組み合わせることにより、僅かで貴重なサンプルからであっても、多くのタンパク質の発現を調べることが可能になります。

関連製品

実験例６：抽出液のタンパク質量と核染色像

WSE-7423 EzBactYeast Crusher
総タンパク質量

(mg)

全細胞抽出
液

細胞質分
画

Hela

4.06

0.47

2.59

1.33

0.07

W480

3.22

2.42

1.77

0.44

0.18

EK293

3.33

2.82

1.73

1.01

0.54

Whole Cell
RIPA

Cytosol
Ext.1

膜分画

Membrane
Ext.2

核分画
Nuclei
Ext.3

不溶性分
画
Insoluble
Ext.4

EzSubcell Extract により、コンフルエントになった１枚の培養ディッシュ（φ10cm、細胞数は 1 ∼ 2 × 107 個）から各細胞株のオルガネラ抽出液を調整した。Whole cell の抽出液は EzRIPA Lysis kit により、同様にコンフルエントの培養ディッシュ１枚から調整しました。タンパク質濃度は BCA 法により定量しました。

大腸菌および酵母と混ぜるだけでタンパク質を抽出する可溶化バッ
ファーです。抽出タンパク質は発現タンパク質の精製、免疫沈降、酵素
活性測定、ウェスタンブロッティング等に使用できます。
Yeast PreLysis buffer
100mL
キットの内容：			
BactYeastLysis buffer 100mL			
DNase 		1mL			Protease inhibitor
1mL

WSE-7420 EzRIPA Lysis kit

動物細胞からのタンパク質抽出に最もよく使用される RIPA バッファーです。抽出タンパク質は上記同様、様々な用途に使用できます。
EzRIPA Lysis buffer
100mL
キットの内容：			Protease inhibitor
1mL
			
Phosphatase inhibitor 1mL

WSE-7424 EzProteoLysis Native

動植物細胞からのタンパク質を抽出する可溶化バッファーです。
構造・ 活性を損なわずに抽出できます。
EzProteoLysis Native 30mL
キットの内容：			Protease inhibitor
0.3mL
			
Phosphatase inhibitor 0.3mL

WSE-7421 EzSubcell extract

Hela

Hela
（凍結細胞）

HEK293Jurkat抽出液２で処理した遠心沈渣（核）のトリパンブルー染色像
EzSubcell Extract の Extraction buffer ２で処理した後の遠心沈渣を、トリパ
ンブルー染色して観察した結果です。核の形状に異常がなく、核膜が保持された状態で単離されていることが示されました。凍結保存した細胞からも同様に核の単離及び各オルガネラの抽出液を単離することができます。

動物細胞と混ぜるだけで各オルガネラのタンパク質が抽出できるキットです。抽出タンパク質は上記同様、様々な用途に使用できます。
Extraction buffer
50/25mL (4 種 )キットの内容：			
DNase 		0.25mL			
Protease inhibitor
1.25mLWSE-7422 EzSubcell Fraction

動物細胞と混ぜるだけで核、ミトコンドリア、細胞質に分画できるキットです。抽出タンパク質は上記同様、様々な用途に使用できます。
Fraction buffer
50mL (2 種 )キットの内容：			
RIPA Lysis buffer
20mL			
Detergent mix
1mL			
Protease inhibitor
0.7mL

一般名称
タンパク質抽出キット

型式

製品名

コードNo

価格

2332336\12,800

イージープロテオライシスネイティブ

2332319\20,800

イージーバクトイーストクラッシャー

2332339\16,800

イージ－サブセルエクストラクト

2332337\48,800

イージーサブセルフラクション

2332338\45,800

イージーPBS

2332380\7,800

イージーアプライ

2332330\9,800NEW タンパク質抽出キット

WSE-7420

EzRIPA Lysise kit

WSE-7424

EzProteinLysis Native

WSE-7423

EzBactYeastCrusher

オルガネラ抽出キット

WSE-7421

EzSubcell Extract

オルガネラ分画キット

WSE-7422

EzSubcell Fraction

リン酸緩衝生理食塩溶液

WSE-7430

EzPBS(-)

SDS-PAGE用サンプル調製用バッファー

AE-1430EzApply

W Native-PAGE用サンプル調製用バッファー

WSE-7011

EzApply Native

イージーアプライ ネイティブ

2332317\9,800二次元電気泳動用サンプル調製用キット

AE-1435

EzApply 2D Kit

イージーアプライ2Dキット

2332335\23,800

タンパク質蛍光標識キット

WSE-7010

EzLabelFluoroNeo

2332333\33,800

ＤＮＡ泳動試料用色素溶液

WSE-7040

EzApply DNA

2332394\5,800

ポリアクリルアミドゲル作製用バッファー

WSE-7310

EzGel Ace イージーゲルエース

2332327\8,800

ポリアクリルアミド濃縮ゲル作製用バッファー

WSE-7155

EzGel Stack イージーゲルスタック

2332329\4,800

ポリアクリルアミド分離ル作製用バッファー

WES-7150

EzGel Sep イージーゲルセップ

2332328\4,800SDS-PAGE用泳動バッファー（粉末）AE-1410EzRun

イージーラン

2332310\6,800

イージーラン

大腸菌・酵母

NE

タンパク質抽出キット

イージーリパライシスキット

イージーラベルフロロネオ

イージーアプライDNA

SDS-PAGE用泳動バッファー（溶液）AE-1411EzRun

2332311\13,800

SDS-PAGE用高分離泳動バッファー

AE-1412

EzRun C+イージーランＣ+

2332320\15,800

トリス-トリシン 泳動バッファー

AE-1415

EzRun T

イージーランＴ

2332325\12,800

トリス-グリシン バッファー

WSE-7055

EzRun TG

NE
Blue-Native PAGE用泳動バッファーNEW

WSE-7056

EzRun ClearNative

WSE-7057

EzRun BlueNative

MOPS泳動バッファー

WSE-7065
WSE-7065L

EzRun MOPS

トリス-酢酸 泳動バッファー

WSE-7050

EzRun TAE

トリス-ホウ酸 泳動バッファー

WSE-7051

EzRun TBE

SDS-PAGE用分子量マーカー

WSE-7015

EzStandard Ⅱ

SDS-PAGE用高分子・広域分子量マーカー

WSE-7035

EzStandard HMW

SDS-PAGE用ポリペプチド分子量マーカー

WSE-7025

EzStandard LMW

SDS-PAGE用有色マーカー

WSE-7020

EzProteinLadder

イージープロテインラダー

EW Native-PAGE用マーカー

WSE-7016

EzStandard Native

ＣＢＢ染色溶液

AE-1340
AE-1340L

EzStain AQua

銀染色試薬キット

AE-1360

EzStain Silver

リバース（ネガティブ）染色キット

AE-1310

EzStain Reverse

小容量遠心ろ過材

AB-1171

アトプレップMF

DNA蛍光染色剤（先染め・後染め）

WSE-7135

EzPreStain DNA&RNA

DNA蛍光染色剤（後染め）

WSE-7130

EzFluoroStainDNA

ウエスタン用ブロッティングパック

WSE-4056/7/8

Q Blot kit C/M/W

ウエスタン用ブロッティング溶液

AE-1460

EzBlotウエスタン用高速ブロッティング溶液

AE-1465

EzFastBlot

ウエスタン用高分子ブロッティング溶液

WSE-7210

EzFastBlot HMW

非タンパク質性ブロッキング溶液

AE-1475

EzBlockChemi

BSAブロッキング溶液

AE-1476

EzBlock BSA

カゼインブロッキング溶液

AEｰ1477

EzBlock CAS

ウエスタンブロッティン用洗浄溶液

WSE-7430

EzPBS(-)

ウエスタンブロッティン用洗浄溶液

WSE-7230
WSE-7230L

Tween溶液
膜用 CBB染脱色試薬キット

2332323\6,800

イージーラン クリアネイティブ

2332313\16,800

イージーラン ブルーネイティブ

2332315\12,800

2332326
2332324\8,800\32,800

イージーランTAE

2332391\9,800

イージーランTBE

2332391\5,8002332341\14,800

イージースタンダード HMW

2332343\29,800

イージースタンダード LMW

2332348\20,800

2332346\25,800

2332344\37,800

イージーステイン アクア

23323702332371\12,800\54,800

イージーステイン シルバー

2332360\18,800

2332350\18,800

3521370\38,000

2332397\15,800

イージーフロロステインDNA

2332395\19,800

Qブロットキット C/M/W

2322441/3/7\19,800

2332600\15,800

2332590\12,800

2332595\12,800

2332615\12,800

イージーブロックBSA

2332616\12,800

イージーブロックCAS

2332617\12,800

2332380\7,800EzTBS イージーティビーエス

23326252332623\7,800\29,800

WSE-7235

EzTween イージーツイーン

2332626\3,800

WSE-7160

EzStain AQua MEM

2332375\24,800

ＨＲＰ用発色基質

WSE-7140

EzWestBlueW

2332456\15,800

ＨＲＰ用発光基質

WSE-7110

EzWestLumiOne イージーウエストルミワン

2332635\13,800

ＨＲＰ用高感度発光基質

WSE-7120S
WSE-7120L

EzWestLumi plus

2332637
2332638\12,800\42,800

抗体剥離剤（ストリッピング剤）

WSE-7240
WSE-7240L

EzReprobe

2332530
2332531\15,800\55,800

W HR-Clear-Native PAGE用泳動バッファーN

イージーランTG

イージーランMOPS

イージースタンダードⅡ

イージースタンダード ネイティブ

イージーステイン リバース
イージープレステインDNA&RNA

イージーブロットイージーファストブロット
イージーファストブロットHMW

イージーブロックケミ

イージーPBSイージーステイン アクア MEM

イージーウエストブルーW
イージーウエストルミプラス

イージーリプローブ

2023.9