Ở
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Ở

目次Ở
Ở
Ở
コンファレンスプログラムỞ
1Ở
発表演題及び講演時間Ở （11 月 8 日午後）Ở
2Ở
Ở
（11 月 9 日午前）Ở
4Ở
Ở
（11 月 9 日午後）Ở
5ỞỞ
シンポジウム講演要旨Ở
ỞS-1Ở Aspergilli における酵素生産制御機構の分子解析Ở
7ỞỞ Ở Ở Ở Ở 塚越規弘（名古屋大学大学院生命農学研究科）Ở
S-2Ở 担子菌のリグニン分解特性Ở
9ỞỞ Ở Ở Ở Ở 桑原正章・本田与一Ở
Ở Ở Ở Ở Ở （秋田県立大学木材高度加工研究所・京都大学木質科学研究所）Ở
Ở S-3Ở 植物病原菌類の分子遺伝学に関する研究の動向
11ỞỞ Ở Ở Ở Ở Ở 日比忠明（東京大学大学院農学生命科学研究科）Ở
Ở S-4Ở 麹菌ゲノム解析の現状についてỞ13ỞỞ Ở Ở Ở Ở Ở 菊池Ở 久（(独)製品評価技術基盤機構バイオテクノロジーセンター）Ở
Ở
口頭発表講演要旨Ở
15ỞỞ
ポスター発表講演要旨Ở
29Ở
Ở
人名索引Ở
53Ở
Ở
糸状菌分子生物学研究会会則Ở
57Ở
Ở
糸状菌分子生物学研究会運営委員名簿Ở
58Ở
Ở

第 1 回Ở 糸状菌分子生物学コンファレンスプログラムỞ
Ở

Ở
Ở
Ở
Ở

Ở日時：平成 13 年 11 月 8 日(木)~9 日(金)Ở
会場：東京大学農学部弥生講堂（東京都文京区 1-1-1）Ở
主催：糸状菌分子生物学研究会Ở
後援：糸状菌遺伝子研究会Ở

Ở11 月 8 日（木）Ở
ỞỞ
13:00-13:10Ở
Ở
13:10-14:46Ở
Ở
14:46-15:00Ở
Ở
15:00-16:00Ở
Ở
16:00-18:20Ở

総会Ở
口頭発表（O-1~O-8）Ở
休憩Ở
ポスター発表（奇数番号）Ở
シンポジウムỞ

S-1Ở Ở Aspergilli における酵素生産制御機構の分子解析ỞỞ Ở Ở Ở 塚越規弘（名古屋大学大学院生命農学研究科）Ở
Ở

S-2Ở 担子菌のリグニン分解特性Ở
桑原正章・本田与一Ở
（秋田県立大学木材高度加工研究所・京都大学木質科学研究所）Ở

Ở

S-3Ở ᳔∸⑋ཋⳞ㢦ࡡฦᏄ㐿ఎᏕ࡞㛭ࡌࡾ◂✪ࡡິྡྷ᪝Ẓᚽ᪺㸝᮶ாኬᏕኬᏕ㝌㎨Ꮥ⏍࿤⛁Ꮥ◂✪⛁㸞ỞỞ

S-4Ở 麹菌ゲノム解析の現状についてỞ菊池Ở 久（(独)製品評価技術基盤機構バイオテクノロジーセンター）Ở

Ở
18:30-Ở ỞỞỞ
11 月 9 日（金）Ở
ỞỞ
9:30-11:30Ở
Ở
11:30-13:00Ở
Ở
13:00-14:00Ở
Ở
14:00-14:15Ở
Ở
14:15-16:15Ở

懇親会（生協食堂）Ở

口頭発表（O-9~O-18）Ở
昼食Ở
ポスター発表（偶数番号）Ở
休憩Ở
口頭発表（O-19~O-28）Ở

1

11 月 8 日Ở 午後ỞỞ
シンポジウム 16:00~18:20Ở
Ở
16:00Ở S-1Ở Aspergilli における酵素生産制御機構の分子解析ỞỞỞ
塚越規弘（名古屋大学大学院生命農学研究科）Ở
16:35Ở S-2Ở 担子菌のリグニン分解特性ỞỞỞ
桑原正章・本田与一（秋田県立大学木材高度加工研究所・京都大学木質科学研究所）Ở
17:10Ở S-3Ở 植物病原菌類の分子遺伝学に関する研究の動向ỞỞỞ
日比忠明（東京大学大学院農学生命科学研究科）Ở
18:45Ở S-4Ở 麹菌ゲノム解析の現状についてỞỞỞ菊池Ở 久（(独)製品評価技術基盤機構バイオテクノロジーセンター）Ở
Ở
口頭発表（O -1 ~O- 8 ）13:10~13:46Ở
Ở
13:10Ở O-1Ở 麹菌の固体培養特異的なマンノシダーゼ遺伝子の単離及び解析ỞỞỞ赤尾Ở 健、吉内くみ、矢原明典、篠田典子、山田Ở 修、後藤邦康、秋田Ở 修ỞỞỞ
（酒総研・微生物）Ở
13:22Ở O-2Ở CPY-EGFP を利用した麹菌 AspergillusỞoryzae の液胞タンパク missort 変異株の取得Ở
ỞỞ
大根田守，有岡Ở 学，北本勝ひこ（東大院農生科・応生工）Ở
13:34Ở O-3Ở 麹菌 AspergillusỞoryzae の新規トランスポゾン様配列（Aot1）とトランスポゼース遺伝子ỞỞỞ
田中尚子、五味勝也（東北大院農・応生化）、柏木Ở 豊（食総研）Ở
13:46Ở O-4Ở AspergillusỞnidulans における GPI アンカー型キチナーゼ(ChiA)の機能の解析ỞỞỞ山崎晴丈、堀内裕之、太田明徳（東大院・農生科・応生工）Ở
13:58Ở O-5Ở Asexual 子のう菌Ở AlternariaỞalternata、FusariumỞoxysporum および PyriculariaỞgriseaỞ
Ở
Ở
の交配型遺伝子ỞỞỞ有江Ở 力・加藤ハナ・金子Ở 功 1・川部眞登・吉田隆延 2・寺岡Ở 徹Ở
ỞỞ
（農工大農・1 カリフォルニア大バークリー校・2 東北農業研究センター）Ở
14:10Ở O-6Ở イネいもち病菌の付着器形成に関与する遺伝子の探索と解析Ở
ỞỞ齋藤憲一郎（農工大連農）、寺岡Ở 徹（農工大農）、山口Ở 勇（理研）、鎌倉高志（理研）Ở
14:22Ở O-7Ở 担子菌の有する優れた芳香族化合物分解能を支える分子機構ỞỞỞ
割石博之、一瀬博文、平塚宣博、田中浩雄（九大院農）Ở
14:34Ở O-8Ở カルボキシン耐性マーカーを用いたシイタケ(LentinulaỞedodes)の形質転換ỞỞỞ
入江俊一*、佐藤利次*、齋藤久美子*、本田与一**、渡辺隆司**、桑原正章**、江井Ở 仁*ỞỞỞ（*岩手生工研、**京大木研）Ở
Ở
ポスター発表（奇数番 号）15:00~16:00Ở
Ở
15:00Ở P-1Ở 糸状菌 AspergillusỞnidulans のミオシン様ドメインを持つキチン合成酵素（CsmA）のỞỞỞ
菌体内での存在状態、生産についての解析ỞỞỞ
竹下典男、堀内裕之、太田明徳（東大院・農生科・応生工）Ở
Ở
P-3Ở 冬虫夏草菌の交配型遺伝子ỞỞỞ
横山英之 1、伊東達雄２、河内一郎２、中谷善博２、氏田Ở 稔２、原Ở 彰２ỞỞỞ（名城大・1 農学ハイテク、２生物化学）Ở
Ở
P-5Ở アスペルギルス属糸状菌の小胞体型 1,2-α-マンノシダーゼ活性についてỞỞỞ吉田Ở 孝 1、加藤陽治 2、浅田芳宏 1、中島Ở 佑 3ỞỞ
Ở
（1 弘前大農学生命、2 弘前大教育、3 東北大院農）Ở
Ở
P-7Ở 紅麹菌 MonascusỞanka の形質転換系の開発ỞỞỞ長島Ở 直、板本明咲枝、寺崎容子＊、穴澤秀治＊(新日本化学、＊協和発酵東京研究所)Ở

2

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Ở
Ở
Ở

P-9Ở FusariumỞoxysporumỞ におけるアスパラギン酸プロテイナーゼ遺伝子のクローニングとỞỞ
遺伝子破壊Ở
Ở
吉田隆延（東北農研センター）川部眞登（農工大農）有江Ở 力（農工大農）Ở
P-11Ở スエヒロタケヘテロ三量体型Ｇ蛋白質αサブユニット ScGP-A,ỞScGP-C の構成的活性型Ở
Ở
変異による子実体形成抑制ỞỞ
山岸賢治、木村俊之、鈴木雅博、新本洋士（東北農業研究センター）Ở
P-13Ở イチゴ黒斑病菌の AF 毒素生合成遺伝子クラスターỞỞ
八田理恵子 1*・伊藤Ở 芳 1・保崎佳嗣 2・田中孝欣 1・高原浩之 2・田中愛子 1・山本幹博 2・ỞỞ
秋光和也 3・柘植尚志 1（1 名大院生農・2 岡山大農・3 香川大農・*現Ở 岩手生工研）Ở
P-15Ở TrichodermaỞreesei 由来新規キシラナーゼ遺伝子(xyn3)のクローニングと誘導発現ỞỞ岡田宏文、小笠原渉、野川優洋、森川Ở 康（長岡技科大・生物）Ở
P-17Ở AspergillusỞnidulans の uvsC 欠失系統におけるメチルメタンスルホン酸感受性の解析ỞỞ
水谷真也・夏目豊彰・伊藤靖夫Ở （信大・理）Ở
P-19Ở プロテアーゼ低生産宿主 AspergillusỞniger の開発ỞỞ
幸田明生、峰時俊貴、尾関健二、熊谷知栄子（大関総研）Ở
P-21Ở 可溶性多糖Ở (ExtracellularỞSolubleỞPolysaccharide:ỞESP)による白麹菌酵素の安定化とỞỞ
局在性への影響ỞỞ
岩下和裕、原田Ở 直、下飯Ở 仁、伊藤Ở 清（酒総研）Ở
P-23Ở AspergillusỞoryzae の生産する主要なキシラナーゼ XynG2 遺伝子プロモーター領域の解析ỞỞ松岡寿保、木村哲哉、粟冠和郎、大宮邦雄（三重大生物資源）Ở
P-25Ở 焼酎麹菌のα-L-アラビノフラノシダーゼ遺伝子の構造解析Ở
Ở
小関卓也、奥田将生、荒巻Ở 功、岩野君夫＊、松澤Ở 洋＊＊ỞỞ
(独法･酒総研、秋田県立大･応生、青森大･工)Ở
P-27Ở AspergillusỞnidulansỞ アミラーゼ高生産変異株の解析ỞỞ
赤坂祐樹、佐藤綾子、勝山陽子、加藤直樹、加藤雅士、小林哲夫、塚越規弘Ở
Ở（名大院、生命農学）Ở
P-29Ở 麹菌 AspergillusỞoryzae の TripeptidylỞpeptidase 遺伝子(tppA)の単離と解析ỞỞ金Ở 鋒傑、有岡Ở 学、北本勝ひこ（東大院農生科・応生工）Ở
P-31Ở AspergillusỞoryzae 解糖系遺伝子 3'-phosphoglycerateỞkinaseỞ(PGK)のプロモーター領域Ở
Ởの解析Ở
Ở佐野元昭、戸田智美、久田博元 1)、小川雅裕 2)、高瀬久美子、大山晃弘 3)、五味勝也 4)、ỞỞ
秋田Ở 修 5)、秦Ở 洋二 1)、町田雅之Ở (産業技術総合研究所、1)月桂冠総合研究所、2)サッポロỞ
Ở
ビール、3)アロカ(株)研究所、4)東北大、5)酒類総合研究所)Ở
P-33Ở 麹菌Ở AspergillusỞoryzaeỞ の液胞膜 ATPase 遺伝子の単離と解析ỞỞ黒木Ở 豊、中島春紫、北本勝ひこỞ (東大院農生科・応生工)Ở
P-35Ở WoroninỞbodyỞ 形成に関与する hex-1Ở 相同遺伝子の麹菌 AspergillusỞoryzaeỞ からのỞỞ
クローニングと機能解析ỞỞ
丸山潤一、中島春紫、北本勝ひこ（東大院農生科・応生工）Ở
P-37Ở 麹菌からのシデロフォア生産調節遺伝子(sre)の単離とその解析Ở
Ở
渡辺久敬、佐藤利次、江井Ở 仁（岩手生工研）Ở
P-39Ở AspergillusỞoryzaeỞ アスパルティックプロテイナーゼỞ IỞ(APaseỞI)遺伝子のクローン化ỞỞ加藤寛貴、横田正仁、竹内道雄（農工大・農・応生科）Ở
P-41Ở 白麹菌α-アミラーゼの発現様式ỞỞ
村島健司＊、伊藤Ở 清Ở (酒類総研、＊広大院･先端研)Ở
P-43Ở 白色木材腐朽菌Ở PhanerochaeteỞchrysosporumỞ のセルロース分解における菌体外ỞỞ
糖代謝系についてỞỞ（東大院農）川合理恵、五十嵐圭日子、鮫島正浩、（森林総研）石井Ở 忠Ở
P-45Ở 糸状菌Ở AspergillusỞnidulansỞeglAỞ 遺伝子のプロモーター解析ỞỞ
小島美沙子、加藤雅士、小林哲夫、塚越規弘（名大院・生命農学）Ở
P-47Ở PenicilliumỞsp.ỞTN-88 株由来エンドおよびエキソ型イヌリナーゼ遺伝子の解析と分子進化ỞỞ
秋元秀俊、森山Ở 聡、中村豊彦、太田一良（宮崎大・農・応生科）Ở

3

11 月 9 日Ở 午前ỞỞ
口頭発表（O -9 ~O- 18 ）9:30~11:30Ở
ỞỞ 9:30Ở O-9Ở 麹菌 A.Ởoryzae のフコース特異的レクチンの解析と大量生産ỞỞỞ
石田博樹、森谷敏康、秦Ở 洋二、川戸章嗣、杉並孝二、安部康久（月桂冠）Ở
Ở 9:42Ở O-10Ở麹菌 A.Ởoryzae の P450nor 遺伝子の発現と解析Ở
ỞỞ
嘉屋正彦、松村憲吾、東田克也、秦Ở 洋二、川戸章嗣、杉並孝二、安部康久、1 高谷直樹、Ở
2ỞỞ
祥雲弘文（月桂冠・総研、1 筑波大・応生化、2 東大院・農・応生工）Ở
Ở 9:54Ở O-11Ở糸状菌 FusariumỞoxysporum の一酸化窒素還元酵素遺伝子(CYP55)の発現制御機構Ở
ỞỞ
高谷直樹、内村浩正、祥雲弘文*（筑波大・応生化、東大院・農・応生工*）Ở
10:06Ở O-12Ởクエン酸生産糸状菌 AspergillusỞniger におけるシアン非感受性呼吸系酵素遺伝子ỞỞỞ
（aox1）の破壊Ở
ỞỞ
桐村光太郎，宇田川史仁，木野邦器，宇佐美昭次（早大・理工・応化）Ở
10:18Ở O-13Ở新規 Zn 結合モチーフをもつ耐熱性デューテロリシン(DLN)遺伝子の大量発現系の構築Ở
ỞỞ
DLN の特異性、CoDLN のメタルセンターỞỞỞ
土井ゆうこ、李Ở 秉魯、池口雅道、大庭裕範＊、生駒忠昭＊、手老省三＊、山内清語＊、ỞỞỞ
高橋幸資＊＊、一島英治（創価大学大学院工学研究科、＊東北大学多元物質科学研究所、Ở＊＊ỞỞ
東京農工大学農学部）Ở
10:30Ở O-14Ở AspergillusỞsaitoiỞ1,2-α-D-マンノシダーゼの活性中心構造ỞỞỞ
多田羅洋太 1、藤田晃子 2、李Ở 秉魯 1、吉田Ở 孝３、高橋幸資 4、一島英治 1Ở ỞỞỞ
（1 創価大院工、2 醸造研、3 東農工大農、4 弘前大農学生命）Ở
10:42Ở O-15Ở AspergillusỞnidulansα-グルコシダーゼのアミラーゼ発現誘導への関与ỞỞỞ
加藤直樹、加藤雅士、小林哲夫、塚越規弘（名大院・生命農学）Ở
10:54Ở O-16Ở AspergillusỞnidulans における USO1Ở 相同遺伝子（usoA）の解析ỞỞỞ
飯島Ở 隆、中島春紫、北本勝ひこ（東大院農生科・応生工）Ở
11:06Ở O-17Ở細胞質ダイニン重鎖のノックアウトと糸状菌の有糸分裂Ở ỞỞỞ井上Ở 哲※Ở Ở J.ỞR.ỞAist（所属Ở コーネル大学植物病理学科、※東大・院・医・細胞生物）Ở
11:18Ở O-18Ở AspergillusỞnidulans および PenicilliumỞpaxilli の RAD51 ホモログ欠失系統におけるỞ
ỞỞ
細胞外 DNA の組み込み様式Ở
ỞỞ
一岡大輔・夏目豊彰・伊藤靖夫（信大・理）Ở
Ở
Ở

411 月 9 日Ở 午後ỞỞ
口頭発表（O -19 ~O -28 ）14:15~16:15Ở
Ở
14:15Ở O-19Ở白色腐朽担子菌のケミカルストレス応答ỞỞỞ
栗原宏征、割石博之＊、田中浩雄＊（九大院生資環・農＊）Ở
14:27Ở O-20Ở木材腐朽菌オオウズラタケのシュウ酸生合成と共役する新規炭素代謝機構ỞỞỞ
島田幹夫、服部武文、ErmanỞMunir,ỞJeongỞJ.ỞYoon,Ở 時松敏明、西出辰徳、（京大木質研）Ở
14:39Ở O-21Ởセロビオース脱水素酵素における分子内電子伝達機構の解析ỞỞỞ（東大・農生科）五十嵐圭日子、鮫島正浩、（日医大・一生化）西野武士Ở
14:51Ở O-22Ởイネいもち病菌における３量体Ｇタンパク質βサブユニットの機能ỞỞỞ
西村麻里江（生物研）,ỞJin-RongỞXuỞ(PurdueỞUniversity)Ở
15:03Ở O-23Ở麹菌 AspergillusỞoryzae の発芽分生子および分生子柄の核動態ỞỞỞ石Ở 一智、丸山潤一、中島春紫、北本勝ひこỞ （東大院農生科・応生工）Ở
15:15Ở O-24Ở白麹菌のセルラーゼ・ヘミセルラーゼ及びその遺伝子ỞỞỞ伊藤Ở 清、*皆川Ở 一（酒類総研、*広大院・先端研）Ở
15:27Ở O-25Ởタカアミラーゼ A 遺伝子プロモーターを利用した醤油麹菌セルラーゼ D 遺伝子の高発現ỞỞỞ
北本則行、松井淳子、安田（吉野）庄子、和久Ở 豊＊（愛知食工技、＊ビオック）Ở
15:39Ở O-26Ở麹菌キシラン・セルロース分解酵素に特異的な転写因子Ở AoXlnR の機能解析ỞỞỞ
丸井淳一朗・北本則行＊・田中昭光＊＊・加藤雅士・小林哲夫・塚越規弘Ở
ỞỞ（名大院・生命農学、＊愛知食品工技、＊＊ヒゲタ醤油・研）Ở
15:51Ở O-27Ở AspergillusỞoryzaeỞ カルボキシペプチダーゼ（CPase）遺伝子の多様性ỞỞỞ
横田正仁、竹内道雄（農工大・農・応生科）Ở
16:03Ở O-28Ở AspergillusỞaculeatus 由来 creA 遺伝子のクローニング，発現，およびセロビオハイドロỞỞỞ
ラーゼ I 遺伝子上流域における結合部位の解析ỞỞỞ
加藤朋子，北脇麻紀，川口剛司，炭谷順一，荒井基夫（阪府大院・応生化，先端研）Ở
Ở
ポスター発表（偶数番 号）13:00~14:00Ở
Ở
13:00Ở P-2Ở AspergillusỞnidulansỞ の分生子形成に及ぼすキチン合成酵素遺伝子破壊の影響ỞỞỞ
一宮維幸、堀内裕之、太田明徳（東大院・農生科・応生工）Ở
Ở
P-4Ở AspergillusỞnigerỞATCC9642Ở 由来イソプルラナーゼにおける糖鎖の役割Ở （第 4 報）Ở
ỞỞ
明星裕美、古川貴章、柏木Ở 豊*、殿塚隆史、西河Ở 淳、坂野好幸Ở ỞỞỞ
（農工大応生科、*独法食総研）Ở
ỞP-6Ở AspergillusỞnidulansỞ のỞ proteinỞO-mannosyltransferaseỞ の構造機能解析ỞỞỞ岡Ở 拓二、濱口Ở 哲、野中真由子、後藤正利、古川謙介（九大院・生資環・生機科）Ở
ỞP-8Ở AspergillusỞnidulansỞ の硝酸を利用した嫌気的エネルギー代謝ỞỞỞ
高崎一人 1，高谷直樹 1，祥雲弘文 2Ở (1 筑波大・応生化，2 東大院・農・応生工)Ở
Ở
P-10Ở 固体培養特異的に発現する glaB 遺伝子プロモーターの転写因子解析ỞỞỞ
久田博元、佐野元昭*、石田博樹、秦Ở 洋二、川戸章嗣、町田雅之*ỞỞỞ(月桂冠・総研、*産総研)Ở
Ở
P-12Ở FusariumỞoxysporumỞ 由来フルクトシルアミノ酸オキシダーゼ遺伝子のクローニングとỞỞỞ
ランダム変異導入による基質特異性の変換ỞỞỞ
炭谷順一，藤原真紀，高橋Ở 守*，古賀晋治*，芳陵一生*、高妻卓司*，川口剛司、ỞỞỞ
荒井基夫（大阪府大院・応生化，先端研，＊旭化成・診断薬研）Ở
Ở
P-14Ở トマトアルターナリア茎枯病菌の宿主特異的 AAL 毒素生合成に関与するポリケチド合成Ở
ỞỞ
酵素遺伝子ỞỞỞ
赤松Ở 創・尾谷Ở 浩・児玉基一朗（鳥取大農）Ở
Ở
P-16Ở 麹菌 CCAAT 結合複合体の分子解剖ỞỞỞ
田上新次郎・亀井健一・加藤雅士・小林哲夫・塚越規弘（名大院・生命農学）Ở

5

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P-18Ở 麹菌用 geneỞtrap ベクターによる形質転換ỞỞ鈴木Ở 聡、Ở 柏木Ở 豊（独立行政法人Ở 食品総合研究所＜食総研＞）Ở
P-20Ở 清酒麹菌Ở (AspergillusỞoryzae)Ở の酸性フォスファターゼ生産と性質ỞỞ藤田Ở 仁,Ở 山根雄一*,Ở 福田Ở 央**,Ở 木崎康造**,Ở 若林三郎**,Ở 河本正次,Ở 秋Ở 庸裕,Ở ỞỞ重田征子,Ở 小埜和久（広大院・先端・生命機能,Ở*(株)醉心山根本店,Ở**酒総研）Ở
P-22Ở REMI 変異株を用いた FusariumỞoxysporumỞf.Ởsp.Ởlycopersici の病原性関連遺伝子のỞỞ
探索と解析Ở
Ở
川部眞登・水谷浩平・寺岡Ở 徹・有江Ở 力（農工大農）Ở
P-24Ở AspergillusỞnidulansỞ 由来ヒスチジンキナーゼ遺伝子Ở (tcsB)Ở 発現産物の機能解析ỞỞ
古川健太郎、勝野泰朗、阿部敬悦、中島Ở 佑（東北大院農・応生科）Ở
P-26Ở シイタケ子実体菌褶部の褐変現象の解析ỞỞ佐藤利次、河田真樹、渡辺久敬、入江俊一、平野達也、齋藤久美子、神田勝弘、江井Ở 仁ỞỞ（岩手生工研）Ở
P-28Ở シイタケにおける外来遺伝子の発現ỞỞ齋藤久美子、佐藤利次、河田真樹、平野達也、八重樫香、江井Ở 仁（岩手生工研）Ở
P-30Ở EGFP を用いた麹菌 AspergillusỞoryzae の ER およびゴルジ体の可視化ỞỞ菊池聡子，丸山潤一，中島春紫，北本勝ひこ（東大院農生科・応生工）Ở
P-32Ở AspergillusỞoryzae のカルシニューリン遺伝子 cnaA のストレス適応における役割Ở
Ở
PraveenỞRaoỞJuvvadi、有岡Ở 学、中島春紫、北本勝ひこ（東大院農生科・応生工）Ở
P-34Ở AnalysisỞonỞtheỞProteinỞSecretionỞPathwayỞofỞAspergillusỞoryzaeỞUsingỞEGFPỞFusionỞ ỞỞProteinỞ
Ở
KumikoỞMasai,ỞJun-ichiỞMaruyama,ỞHarushiỞNakajimaỞ&ỞKatsuhikoỞKitamotoỞ ỞỞ(DepartmentỞofỞBiotechnology,ỞUniversityỞofỞTokyo)Ở Ở
P-36Ở AspergillusỞnidulans における液胞形成関連遺伝子 avaB の解析ỞỞ岡Ở 真如、松田Ở 豊、有岡Ở 学、北本勝ひこ（東大院農生科・応生工）Ở
P-38Ở プロテオーム解析による麹菌の酵素生産・分泌条件の検討ỞỞ
長嶺一輝、伊藤Ở 清（酒類総研）Ở
P-40Ở AspergillusỞaculeatus の新規セルロース分解酵素とその作用ỞỞ
高田悟郎*1・金澤成俊*1・土屋尊子*1・川口剛司*2・荒井基夫*2・何森Ở 健*1ỞỞ
（香川大農*1・大阪府大院農*2）Ở
P-42Ở 麹菌由来Ở kexinỞ 様プロセッシング酵素の機能解析及び相互作用タンパク質の探索Ở
Ở水谷Ở 治、野島Ở 聡、山本盛真、山形洋平、阿部敬悦、中島Ở 佑（東北大・院農・分子酵素）Ở
P-44Ở 酵母菌 PichiaỞpastoris において発現させたセロビオース脱水素酵素の性質ỞỞ吉田Ở 誠、大平Ở 剛、五十嵐圭日子、長澤寛道、会田勝美、鮫島正浩Ở （東大院農）Ở
P-46Ở AspergillusỞoryzaeỞ 由来 Pyrithiamine 耐性遺伝子（ptrA）の利用Ở
Ở
窪寺隆文、山下伸雄、西村Ở 顕（白鶴酒造・研究開発室）Ở
P-48Ở 糸状菌キトサナーゼ遺伝子のクローニングと構造解析Ở
Ở下坂Ở 誠，張Ở 孝勇，宮澤Ở 恭，小平律子，野川優洋，岡崎光雄＊ỞỞ（信州大・繊維・応生科，信州大・遺伝子実験施設＊）Ở

6

Symposium

7

S-1
Aspergilli における酵素生産制御機構 の分子解析Ở
塚越規弘（名古屋大学大学院生命農学研究科）Ở

Ở
カビは炭素源としてグルコースのような単糖からオリゴ糖や多糖、各種有機酸、アルコール類など、窒素源としてアンモニウムやアミノ酸、プリン、アミド、硝酸、亜硝酸など幅広い有機物を利用する多数の代謝系を備えている。また、カビは「酵素の宝庫」といわれ、多数の実用酵素が実際に生産され、極めて応用価
値の高い微生物群である。それぞれの代謝系や酵素生産系は環境に応答して複雑に制御されており、カビは多様な制御系の研究材料として好適である。さらに、カビの優れたタンパク質生産能を利用した異種タンパ
ク質生産系の開発も注目をされている。Ở
カビの中でも AspergillusỞnidulans は完全合成培地に生育可能であり、また、有性世代および準有性世代があり、この生活環を利用して遺伝学的にも解析されている。これまでに多数の変異株が A.Ở nidulans から分離され、多様な代謝系や制御系に関する遺伝学的知見が蓄積されている。最近は遺伝子工学的にもこれらの知見が分子レベルで証明されている。遺伝子発現制御系に関するこれまでの成果を総合すると、多くの遺伝子の発現は大別すると２種類の転写因子により転写レベルで制御されている。すなわち、１）ある特定の基質代謝に必要な遺伝子（群）のみを正に発現調節する転写因子（代謝経路特異的転写因子；
Pathway-specificỞtranscriptionỞfactors）及び２）異なる代謝系に関わる多数の遺伝子の発現を正または負に調節したり、発現量を増大させたりする転写因子（広域転写因子；Ở WideỞdomainỞtranscriptionỞfactors）の２種類である。Ở
遺伝子発現の多くは代謝経路特異的転写因子および広域転写因子の両者で複雑に制御されている。例えば、

A.Ở nidulans はアセトアミドを炭素源としても窒素源としても利用できるが、その代謝に関わるアセトアミ
ダーゼの遺伝子（amdS）は本遺伝子にどちらかというと特異的な AmdR,ỞFacB,Ở AmdA の３種類の制御因
子関与で誘導され、さらに広域転写因子 CreA,ỞAreA,ỞHapỞcomplex によって、負にも正にもまた転写量までも制御されている。麹菌の生産するタカアミラーゼ A は典型的な誘導酵素で、転写誘導因子 SreB/AmyRに仲介されて誘導され、カタボライト抑制を仲介する転写抑制因子 CreA により抑制され、転写促進因子 HapỞcomplex により転写量が増大する。応用的には発現制御に関わるこれらの転写制御因子の機能特性を解明し、利用することから効率的な異種タンパク質生産技術の開発が期待される。Ở
タカアミラーゼ A 遺伝子の発現 誘導機構Ở
１）誘導剤の解析とαーグルコシダーゼ B（AgdB）：各種オリゴ糖のタカアミラーゼ A 遺伝子の誘導能を検討した結果、マルトース、コージビオース、イソマルトースなどが誘導能を示したが、イソマルトースは低濃度でしかも短時間でタカアミラーゼ A を最も効果的に誘導した。このことから、マルトースなど各種オリ
ゴ糖はイソマルトースへ変換された後、あるいはイソマルトースを経由して、タカアミラーゼ A 遺伝子を誘導する可能性が考えられた。マルトースを基質としてイソマルトース合成酵素活性を検索した結果、イソマ
ルトース合成酵素活性が A.Ở nidulans の細胞抽出画分に検出されたので、本酵素を分離するとともに遺伝子をクローン化した。本酵素は７４kDa と５５kDa のヘテロ２量体で構成された糖転移活性の高いαーグルコ
シダーゼの一種であるが、これまでのαーグルコシダーゼ A と相同性が低く、αーグルコシダーゼ B と命名した。agdB 遺伝子は３つの短いイントロンで分断された３０５５ｂｐからなり、５ʼ側には７４kDa のサ
ブユニットが、３ʼ側には５５kDa サブユニットがコードされていた。この遺伝子構造からαーグルコシダ
ーゼ B は前駆体として合成され成熟過程でヘテロ２量体にプロセスされると推測される。現在、タカアミラ

8

ーゼ A 遺伝子の発現誘導における本酵素の役割を解析している。Ở
２）転写誘導因子 SREB/AmyR の解析Ở ：タカアミラーゼ A 遺伝子の発現誘導を仲介するシスエレメントのプロモーター解析から、CGGAAATT 配列がスターチに応答してタカアミラーゼ A 遺伝子を誘導することが示され、この配列を SRE(StarchỞResponsiveỞElement)と命名した。SRE は A.oryzae のアミラーゼ誘導因子 AmyR の結合配列の一つと完全に一致していたことから、SREB と AmyR は類似した因子と考え、A.Ở

nidulans から amyR ホモログをクローン化した。A.ỞnidulansỞAmyR は A.Ởniger 及び A.ỞoryzaeỞAmyR と７０％以上の相同性を示し、またその結合配列が SRE と同一ということから、SREB は A.Ở nidulans のỞAmyR と同定した。さらに、amyR の破壊株はスターチやマルトースを炭素源として生育できず、誘導条件
下でもタカアミラーゼ A を合成できないことなどから、SREB/AmyR はタカアミラーゼ A 遺伝子の転写誘導因子でると考えられた。SREB/AmyR は酵母のマルトース資化にかかわる遺伝子群の転写誘導因子 Mal63と５ヶ所で相同性が高く、これら相同領域の機能解析や amyR （ malA ）変異株の変異点の解析から、
SREB/AmyR の誘導シグナルの認識部位や転写活性化部位の特定を試みている。Ở
タカアミラーゼ A 遺伝子の転写 促進因子 C C AAT 結合因子（H ap Ởcomp le x）Ở
タカアミラーゼ A 遺伝子のプロモーター解析から転写量の増大に CCAAT 配列が重要な役割を果たすことが示めされ、CCAAT 結合因子の構造と機能の解明を試みている｡Ở CCAAT 結合因子は酵母で最初に発見され、HapỞ complexỞ と呼ばれ、Hap2p/3p/4p/5p の４種類のサブユニットで構成されている｡Ở 酵母では
Hap2p/3p/5p のヘテロ３量体で CCAAT 配列へ結合し、Hap4p が転写を活性化するサブユニットであることが示されている。一方、糸状菌については３グループが A.ỞnidulansỞ の CCAAT 結合因子を解析し、タカ
アミラーゼ A、
アセトアミダーゼ、
イソペニシリン N 合成酵素遺伝子のプロモーターに結合する因子として、それぞれ AnCP,Ở AnCF,Ở PENR1 を同定したが、これらは同一因子であることが示されている。また、 A.Ở

oryzae からも CCAAT 配列結合因子、AoCP、が解析されている。Aspergilli の CCAAT 結合因子は酵母HapỞcomplex のサブユニット Hap2p/3p/5p に類似した HapB/C/E の３種類のサブユニットで構成され、DNA 結合にはこれら３種類のサブユニットのみで十分であることが再構成実験で証明されている。また、AoCPỞ の 3 種類のサブユニットは A.Ởnidulans の AnCP サブユニットと機能的に互換可能であることが示されている。HapỞcomplex 形成並びに DNA 結合に要求される最小領域について部分欠失サブユニット遺伝子を作製し検討した結果、高等真核生物、カビ、酵母の間で保存されている「コア領域」のみで十分であることが示された。しかし、転写促進には「コア領域」に加えて HapCỞ の N 末領域と HapB の C 末領域が必要であった。酵母 Hap4p に相当する HapD サブユニットの存在は酵母以外ではその存在が不明であり、HapD様遺伝子のクローン化が試みられ、これまでに KluyveromycesỞlactis からのみ分離されているに過ぎない。
また、両者間のアミノ酸配列の相同性は４３％と低いが、N 末領域と C 末端領域に１１アミノ酸と１６アミノ酸からなる保存配列を有していた。最近、酵母の twoỞhybridỞ 系を用いて糸状菌 HapỞcomplex と相互作
用する HapD 様の遺伝子を分離したが、本因子は N 末領域の１１アミノ酸のみを保存していた。また、NeurosporaỞcrassaỞgenomicỞDNAỞdatabase にも類似遺伝子が存在している。Ở
Ở HapỞ complex で制御されるカビの分泌酵素遺伝子としては、タカアミラーゼ A 遺伝子を始めとして A.Ở

nidulans のセルラーゼ遺伝子（eglA）、T.Ở reesei のキシラナーゼ遺伝子（xyn1,Ở xyn2）及びセロビオヒド
ラーゼ遺伝子（cbh2 ）などをあげることができる｡Ở
Ở
Molecular analyses of regulatory mechanisms of enzyme production in aspergilli
Norihiro Tsukagoshi
Graduate School of Bioagricultural Sciences, Nagoya University9S-2
担子菌のリグニン分 解特性Ở桑原正章 1)・本田与一 2)Ở
（秋田県立大学木材高度加工研究所 1)・京都大学木質科学研究所 2)）Ở
Ở 自然界においては、木質など、植物に由来する遺体は、環境中に存在する微生物群によって無機化される。
分解過程で最初に作用するのは、腐生性の微生物群である。特に植物の細胞壁は担子菌を主体とする糸状菌によって先ず攻撃をうける分解と考えられる。植物の細胞壁はセルロースやヘミセルロースなどの多糖類やフェノール性ポリマーであるリグニンからなり、これらの成分はいずれも担子菌群によって分解される。成分のうち特にリグニンの分解能は担子菌の持つ得意な性質と考えられる。
Ở 本シンポジウムでは特にリグニンの分解に焦点をあて、担子菌とそれの生産する酵素によるリグニンの分解機構、リグニン分解酵素合成をコードする遺伝子の特質について紹介することにする。
Ở
１．リグニン分解性担子菌Ở
Ở リグニンを分解する活性の高い担子菌は白色(WhiteỞrotỞfungi)と呼ばれる。しかし、これらの糸状菌はリ
グニンを炭素源およびエネルギー源として利用することはなく、セルロースやヘミセルロースなどの多糖その他の低分子化合物を炭素源として利用すると考えられている。白色腐朽菌の種類は多く 600 種類にも達す
るともいわれている。また、PleurotusỞostreatusỞ（ヒラタケ、シメジ）、P.ỞeryngiiỞ（エリンジ）、LentinulaỞ
(Lentinus)ỞedodesỞ （シイタケ）など食用菌として人工栽培されている担子菌にも高いリグニン分解活性を示すものがある。Ở
Ở
２．リグニン分解酵素Ở
これまで、ラッカーゼ(Lac)、リグニンペルオキシダーゼ(LiP)およびマンガンペルオキシダーゼ(MnP)の３種類の酵素が分離されている。特に後２者については詳細な検討が行われている。これらの酵素の合成は、生産菌の培養条件などに依存する二次代謝と考えられている。すなわち、これら酵素は菌体の生育が停止した条件で生産されること、特に培地中の炭素源と窒素源の濃度が低下することが必要とされている。また、培養の気相の酸素濃度が高いことも必要とされている。さらに、MnP では培地中への Mn の添加により、また、LiP は二次代謝産物のベラトリルアルコールの添加によっても誘導される。しかし、酵素の合成の引き金になるのは何かについてはまだ明確な見解は提出されていない。これまで、30 以上の菌種においてこれらの酵素の生産が認められているが、LiP に比べ、MnP がより多くの担子菌で活性が検出されている。これらの酵素はそれぞれ複数のアイソザイムとして生産され、アイソザイムの生産パターンは菌の種類、培養条件により異なる。アイソザイムの持つ機能については明確にはなっていない。Ở
Ở 一方、酵素反応機構については多くの知見が得られている。まず、これら酵素の反応の基本は基質から１電子を引き抜く１電子酸化反応である。LiP は非フェノール性基質からカチオンラジカルを生成し、MnP とLac はフェノール性の基質からフェノキシラジカルを生成する。LiP と MnP はヘム鉄を活性中心に含む。これら酵素の強力な酸化反応により通常のペルオキシダーゼでは酸化の不可能な基質の酸化も可能となると考えられている。これらの酵素のうちゼ MnP の反応ユニークで、直接の基質は Mn(II)であり、生成した Mn(III)が種々の基質を酸化する。しかし、近年 MnP には多様な分子形態が存在し、LiP のように、Mn(II)の非存在下でも酸化反応を示すことがわかってきている。Ở
Ở 一方、酵素表面からヘムまで、どのようにして電子が到達するかという問題がある。LiP ではタンパク表層に W171 が存在し、これれが基質の電子を受け取るものと考えられている。また、ある種の菌から得られる MnP においても W170 がタンパク表層で電子の受け渡しを行うものと考えられている。このように、LiPと MnP には当初考えられていたような厳密な区別がつかない反応も知られるようになっている。塩基配列の解析においてもそれを裏付ける示唆が PleurotusỞ ostreatus や P.Ở eryngii で得られている。LiP と MnPの中間的な構造を持つ MnP は VersatileỞMnP と呼ばれる場合がある。Ở
さらに、酸化反応への低分子化合物の関与に関する知見が多く得られてきている。リグニンは植物細胞壁の二次壁全体にまた細胞間層に高濃度で分布している。リグニン分解酵素は菌体外酵素であることはポリマ
ーを分解することに有利に働いている。しかし、酵素が細胞壁のマトリクスの中に直接進入し、周囲のリグ
ニンを分解するとは考えにくい。LiP においてはベラトリルアルコールが、また MnP では Mn(II)のような

10低分子化合物がメディエーターになって細胞壁中に進入し、リグニンを酸化すると考えるときわめて好都合である。しかし、実際はこれだけでは説明がつかず、種々の低分子化合物からのラジカルの形成を伴う分解機構が提案されている。われわれは、不飽和脂肪酸が MnP により過酸化反応を受け、生成した過酸化ラジ
カルがリグニンを攻撃すること、また、このラジカルが細胞壁内で継続して生成する系を提案している。さらに、担子菌には種々の活性酸素ラジカルの生成系が知られており、リグニン分解への関与も想定されている。MnP は生体内では、種々の有機酸たとえば乳酸やシュウ酸などとキレートすることにより安定化する。Ở
Ở
３．リグニン分解酵素遺伝子の構造と形質転換系の構築Ở
Ở 上記３種類のリグニン分解酵素をコードする遺伝子は種々の白色腐朽菌からクローン化され、塩基配列が解析されている。また、アイソザイムに相当する塩基配列も明らかにされている。これらの配列においては、
転写開始コードの上流にはタンパクの分泌を指示するシグナルペプチドをコードする配列が存在する。また、多数のイントロンを含む。一方、プロモーター領域には転写の調節に関与すると考えられるモチーフが存在する。すなわち、TATAA 配列、CCAAT 配列、cAMP 結合部位、SP-1 認識配列、芳香族化合物に対応する
配列、heatỞshockỞelement(HSE)、metalỞresponseỞelementỞ(MER)などである。HSE や MER が実際に発現することは、加熱条件下あるいは Mn 存在下で mRNA の合成が起こることにより確認されている。Ở
Ở 一方、いくつかの白色腐朽菌で形質転換系が構築され、LiP あるいは MnP が発現している。LiP や MnPの大腸菌や酵母での発現も検討されている。しかし、これらの宿主で合成されるタンパクはヘムを含まない
ため、尿素存在下でヘミンを添加して活性のあるタンパクを再構築すること必要である。Ở
タンパクの再構築を行う必要のない担子菌を宿主とする系については、HeterologousỞ と HomologousỞ
の両方の系が検討されている。たとえば、PhanerochaeteỞ chrysosporium では Heterolougous および
HomologousỞ の形質転換系がつくられ、LiP と MnP の両酵素が発現している。また、CoriolusỞ hirsutus（アラゲカワラタケ）、PhlebiaỞ radia などでも Homologous 発現系が得られている。一方、われわれは、
食用担子菌である PleurotusỞostreatusỞ の形質発現系を得ている。この系では、本菌のコハク酸脱水素酵素
Ip サブユニット遺伝子(sdi1)のクローン化を行い、この遺伝子に変異導入して得たカルボキシン耐性遺伝子(pTM1)を用いて安定な形質転換系を作成した。一方、本菌より MnP の主要アイソザイムをコードする遺伝
子 mnp3 をクローン化し、sdil のプロモーター下流に mnp3 を連結し、それに sdi1 のターミネーターを連結して形質転換プラスミドを作成した。最終的に pTM1 の共存下で本プラスミドを P.Ởostreatus に導入して形質転換を得た。得られた形質転換体は野生株よりも高い MnP の生産能を示し、導入された mnp3 は野生株の mnp3 よりも培養の早期に発現した。Ở
Ở
参考文献Ở
（総説）Ở
1.Ở Ở 渡辺隆司、桑原正章：リグニンの酵素分解、化学と生物,Ở38,Ở161-166Ở(2000)Ở
2.

本田与一：きのこの遺伝子工学,Ở 木材研究・資料,ỞNo.Ở32,Ở6-15Ở(1996)Ở

3.

渡辺隆司：Ở 白色腐朽菌のフリーラジカル生成プロセス,ỞNo.Ở36,Ở34-50Ở(2000Ở)Ở

4.

D. Cullenn: Recent advances on the molecular genetics of lygninolytic fungi, J. Biotechnol,273-289 (1997)

5.

A.Hatakka: Biodegradation of lignin, in “Biopolymers “ Vol. I, ed. M. Hofrichter and A.Steinbuchel,
Wiley-VCH, p.129-180 (2000)（Pleurotus ostreatus の形質発現に関する報告）
6.

T. Irie et al: Homologous expression of recombinant manganese peroxidase genes in ligninolytic fungus
Pleurotus ostreatus, Appl. Microbiol. Biotechnol., 55, 566-570 (2001)

Characterization of Ligninolytic Activity of Basidiomycetes
KUWAHARA, Masaaki and HONDA, Yoichi (Wood Research Institute, Kyoto University)

11

S-3
植物病原菌類の分子 遺伝学に関す る研究 の動向
日比忠明（東京大学大学院農学生命科学研究科、植物病理学研究室）Ở
Ở
植物病原菌類は、従来、そのすべてが菌界に属するとされていたが、最近の生物８界説によれば、根こぶ病菌などは原生動物界ネコブカビ門に、べと病菌や疫病菌などはクロミスタ界卵菌門に、それ以外のすべての植物病原菌類は菌界に分類されることになった（柿嶋,Ở 2001）。しかし、ここでは便宜上、従来の分類体系に従って話を進めることとする。Ở
植物病原菌類のゲノム解析は、現在、国際的なプロジェクトによって、イネいもち病菌やトウモロコシご
ま葉枯病菌など数種の重要な病原菌類を対象に、高密度の染色体地図の作製、アカパンカビゲノムとの相同領域地図の作製、ゲノムの全塩基配列の決定などの解析作業が着実に進行しつつあり、すでにイネいもち病菌については米国企業でゲノムの全塩基配列の解読に成功している。Ở
Ở 植物病原菌類の分子遺伝学的研究の主な目的としては、基礎分野では、1)Ở 植物病原菌類の系統分類学的解析、2)Ở 植物病原菌類の生殖ならびに病原性に関与する遺伝子の構造と機能の解析、3)Ở 植物病原菌類の薬剤耐性に関与する遺伝子の構造と機能の解析、また、応用分野では、1)Ở 植物病原菌類の遺伝子診断技術の開発、Ở 2)Ở 植物病原菌類由来の遺伝子導入による耐病性トランスジェニック植物の開発などが、それぞれあげられる。このうち、ここでは、1)Ở 病原性に関与する遺伝子、2)Ở 薬剤耐性に関与する遺伝子に絞って、それらの構造と機能に関する研究の現状についてその概略をご紹介することにしたい。Ở
Ở
病原性に関与する遺伝 子ỞỞ 植物病原菌類の病原性に関与する遺伝子の研究は、植物の病害抵抗性に関与する遺伝子の研究と密接に連動しながら、現在、急激な展開を示している。病原性に関与する遺伝子としては、宿主に対する特異的ある
いは非特異的な毒素の産生に関わる遺伝子、植物のクチン表層あるいは細胞壁などの分解に関わる酵素の遺伝子、発芽管・付着器・侵入菌糸あるいは吸器などの侵入器官の形態形成に関わる遺伝子、宿主が産生する
ファイトアンティシピンやファイトアレキシンなどの抗菌物質の解毒や排出に関わる遺伝子、宿主の抵抗性発現のシグナル伝達を阻害するサプレッサー遺伝子、逆に特異的エリシターを産生して宿主の真性抵抗性の発現を誘導する非病原性遺伝子、さらには病原性の変異に関わる可能性のあるトランスポゾンなどが含まれる。ここでは、比較的研究が進んでいるイネいもち病菌の病原性関連遺伝子の例を簡略にご紹介する。Ở
Ở イネいもち病菌は、胞子がイネの葉面上に接着して発芽した後、付着器を形成し、さらにこの付着器から膨圧によって侵入菌糸が突出・分化してイネ表皮を機械的に突き破ることによってイネ体内に侵入する。この後、イネいもち病菌のあるレースに対して感受性の品種では、その体内で旺盛な菌糸の伸長が行われ、やがて、菌糸から分化した分生子柄上に新たな胞子が形成される。一方、抵抗性の品種では、最初の侵入部位
周辺の細胞に過敏感死が生じ、以後の菌糸の伸長が阻止される（ZeiglerỞ etỞal.,Ở1995）。Ở
Ở こうしたイネいもち病菌の発育・分化に伴って各種の遺伝子が発現するが、付着器の分化誘導にはハイド
ロフォービン遺伝子 MPG1 などが、付着器の形成に関わる細胞内シグナル伝達系には GTP 結合タンパク質
遺伝子 MAGB 、cAMP を合成するアデニル酸シクラーゼ遺伝子 MAC1、cAMP 依存性プロテインキナーゼ（PKA）遺伝子 CPKA,Ở MAP キナーゼ遺伝子 PMK1 などが、また、付着器からの侵入菌糸の形成にはメ12ラニン合成系酵素遺伝子 ALB1、BUF1、RSY1 およびその転写制御遺伝子 PIG1、テトラスパニン様タンパ
ク質遺伝子 PLS1、P 型 ATP アーゼ遺伝子 PDE1 、MAP キナーゼ遺伝子 MPS1 などが、それぞれ関与していることが報告されている（Valent,Ở1997;ỞHamerỞ&ỞTalbot,Ở1998;Ở 鎌倉ら,Ở2001）。しかし、それら遺伝
子間相互の発現制御機構やシグナル伝達機構の全容については今後の解明に待たねばならない。Ở
Ở イネいもち病菌と植物種との間、あるいはイネいもち病菌のレースとイネ品種との間で、遺伝子対遺伝子の関係で宿主の真性抵抗性を誘導する非病原性遺伝子として、前者では 16kD タンパク質をコードする

PWL2 、後者ではメタロプロテアーゼをコードする AVR-Pita などがクローニングされている（ValentỞetỞal.,Ở
1995;Ở ValentỞ etỞal.,Ở2000）。このうち AVR-Pita に対応するイネの真性抵抗性遺伝子 Pi-ta は、ヌクレオ
チド結合サイト（NBS）とロイシンリッチ領域（LRD）を含む細胞質内レセプタータンパク質をコードして
おり、AVR-Pita はこの Pi-ta の LRD と直接結合する（ValentỞ etỞ al.,Ở 2000）。これによって、以降、一連のシグナル伝達系を経てプログラム細胞死が引き起こされ、その結果、イネの抵抗性が発現する。イネいもち病菌の病原性に関与する遺伝子としては、上記の他にも、ABC トランスポーター遺伝子 ABC1（HamerỞ etỞ

al.,Ở1999）など数多くの報告がある。また、トランスポゾンとしては、同方向の末端反復配列（LTR）を持
つレトロトランスポゾン MAGGY、逆位の末端反復配列（ITR）を持つトランスポゾン Pot3 など数種が知られているが（土佐ら,Ở2000）、最近、Pot3 の AVR-Pita への転位が病原性の変異を引き起こすことが示された（ValentỞ etỞal.,Ở2001）。Ở
Ở
薬剤耐性に関与する遺 伝子Ở
Ở 現在、農業の現場では薬剤耐性菌の蔓延がきわめて深刻な問題となっている。植物病原菌類における薬剤耐性機構としては、従来から、薬剤標的タンパク質の変異による耐性機構が知られており、著者らもカンキ
ツ緑かび病菌のベンズイミダゾール剤耐性が、本剤の標的タンパク質であるβ-チューブリンの 198 番目あるいは 200 番目の１アミノ酸の置換によることを明らかにした。一方、著者らは薬剤標的タンパク質の過剰発現による耐性機構を新たに見いだすとともに、薬剤に対する基本的な耐性には薬剤を菌体外に排出するABC トランスポーターが必須であることを証明した。すなわち、カンキツ緑かび病菌の DMI 剤耐性は本剤の標的酵素であるỞ P450-14 デメチラーゼの過剰発現によって起こり、さらにこの過剰発現は本遺伝子上流の プ ロ モ ー タ ー 領 域 に 存 在 す る 重 複 エ ン ハ ン サ ー の 転 写 促 進 作 用 に よ る こ と が 明 ら か に さ れ たỞ
(HamamotoỞetỞal.,Ở2000)。
Ở また、カンキツ緑かび病菌の ABC トランスポーター遺伝子 PMR1 および PMR5についての遺伝子破壊実験から、PMR1 が DMI 剤、オリゴマイシン、フロレチンなどの、PMR5 がベンズ
イミダゾール剤、ジチアノン、レスベラトロールなどの、細胞外排出にそれぞれ必須で、本菌の各種薬剤や毒性物質に対する基本的な耐性を分担して決定している遺伝子であることが示された(NakauneỞ etỞ al.,Ở
1998)。現在、著者らはイネいもち病菌でも同様の ABC トランスポーター遺伝子 ABC2 が各種の抗いもち病
殺菌剤の細胞外排出に関与していることを明らかにしつつあるが、ABC2 と病原性との関わりや ABC トラ
ンスポーターによる特異的な薬剤の認識と排出ならびに発現誘導の分子機構などについての詳細な解明は今後の課題である。Ở

Molecular Genetics of Phytopathogenic Fungi.
Tadaaki HIBI : Laboratory of Plant Pathology, The University of Tokyo.

13

S-4
麹菌ゲノム解析の現 状について
菊池Ở 久（（独）製品評価技術基盤機構バイオテクノロジーセンター）Ở

（１）独立行政法人製品評価技術基盤機構についてỞ
製品評価技術基盤機構（nationalỞinstituteỞofỞtechnologyỞandỞevaluationỞ 、以下「NITE」という。）は本
年４月に前身の通商産業省製品評価技術センターから独立行政法人に移行した組織である。ＮＩＴＥは国民・社会ニーズ、行政ニーズに即応し、技術的な評価分析を実施し、最新の技術情報を国民、産業界へ提供する知的基盤期間である。バイオテクノロジー分野、化学物質管理分野、適合性評価分野、人間生活福祉分
野の４分野があり、東京渋谷区にある本所及び支所が北海道から九州まで９箇所設置され、全体の職員数は４１５名となっている。Ở
ＮＩＴＥは、経済産業省の行政サービス実施部門であり、工業製品等に関する技術的な評価、分析及び調査
研究等を行い、経済産業行政に必要な技術上の知見、ノウハウなどのうち、４分野について体系的に収集、評価、整理及び提供等を行っている。また、その技術能力を活用し、内外における取引の適正化・円滑化を図るため、経済産業省に係る法令に基づく認定・審査業務等を国際ルールに基づいて実施しているいわゆる政策実施部門の役割を果たしている。
（２）バイオテクノロジーセンターの業務について
バイオテクノロジーセンターは平成５年７月に発足し、現在、職員・臨時職員等総勢約８０名で業務を行っており、バイオテクノロジー産業を支える中核機関として、微生物を中心としたゲノム解析や生物遺伝情報の提供などを行うことにより、バイオ産業の創生・育成及びバイオ分野の研究支援に貢献することを目的としている。
特に我が国における微生物を中心とした中核的な生物遺伝資源機関として欧米並の体制を整備することを目指し、バイオテクノロジーの研究開発及びその事業化の基礎となる生物遺伝資源の探索、収集、分離、同定等を行い、それらを整理保存し、さらにｹﾞﾉﾑ情報を付加した生物遺伝情報として広く提供することとしている。
現在、千葉県かずさアカディミアパーク内に施設を建築中であり、今年度末に完成し、平成１４年から本格的に業務を開始することとしている。
ゲノム解析については、キャピラリーシーケンサ３２台、平板ゲル型シーケンサ１８台を擁し、サンプル自動供給装置等による周辺機器の整備を行っているところある。
これまでに嫌気性超好熱古細菌、好気性超好熱古細菌、好酸性好熱菌、黄色ブドウ球菌等のゲノム解析を終了し、データ公開を行っている。現在、コリネ菌、放線菌、表皮ブドウ球菌、ブレビバチルス菌及び麹菌の解析を実施中である。
（３）麹菌ゲノム解析Ở
ａ．経緯Ở
一昨年から昨年にかけて、企業、研究機関等を対象に実施したゲノム解析対象生物のアンケート調査の結果、

14

最も要望が多かったのが麹菌であったこと、我が国では広く酒・味噌・醤油などの伝統産業に古くから利用されていること、タンパク質の分泌生産能力が高く多くの食品・医療産業で利用されていること、米国でGenerallyỞRegardedỞasỞSafe として認定されている安全性の高い微生物であること、以上よりゲノム解析が進み遺伝子情報が解明された場合、遺伝資源としても広範囲な分野で利用出来る可能性が高いこと等から、麹菌のゲノ解析を行うことを決定した。Ở
欧米ではすでに麹菌近縁種のゲノム解析が実施されていることから、我が国の産業に広く使われるている麹菌のゲノム解析が早急と必要と判断した。
ｂ．ゲノム解析体制
ＮＩＴＥ理事長の諮問機関であるバイオテクノロジー業務推進委員会（以下「委員会」という。）において麹菌のゲノム解析の実施が承認されたことを受け、平成１３年７月１３日から７月２６日までの間公募を行った。その結果、１６の企業、研究機関等で構成するコンソーシアムが結成され、（代表：財団法人日本醸造協会）ゲノム解析の共同研究の提案がなされた。提案書は委員会で審議し承認されたのちＮＩＴＥとコンソー
シアムが共同研究契約を締結してゲノム解析を開始したところである。なお、ｹﾞﾉﾑサイズが約３５Ｍｂｐと大きくゲノム解析には技術的な困難が伴うことが予想されることと短期間に効率的にゲノム解析を終了させるためコンソーシアムとは別組織として麹菌ゲノム解析戦略会議を設置し、方針を練りながらｹﾞﾉﾑ解析を進めることとしている。
ｃ．共同研究の概要
共同研究の内容は①全ｹﾞﾉﾑ塩基配列の解析②ｹﾞﾉﾑ情報の利用に関する研究よりなる。①についてはｼｮｯﾄガン
ライブラリーを構築し大量シーケンスを行う。またＢＡＣ等を用いた整列化ライブラリーを構築しコンティ
グのマッピングに利用する。さらにセントロメア及びテロメアなどのゲノム解析に重要な情報を収集・解析
し解析された塩基配列にアノテーションを付加し、データベースを構築する。最終的にはデータベースは公開される。
②については麹菌のｹﾞﾉﾑ情報を利用して、特異性などに高い品質を有するＤＮＡチップを設計・作成する。
また発酵過程などにおける全遺伝発現の発現プロファイルの予測の情報基盤を整備し転写制御情報を解析し、人工的な高機能プロモーターの構築に利用する。さらに麹菌全タンパク質について、プロテオーム解析を行いｹﾞﾉﾑ情報を利用して遺伝子との対応付けを行う。
最終的には麹菌の実用化遺伝子について、ｹﾞﾉﾑ科学的視点からの検討を行い、産業への実用化を目指す。

Current progress of Aspergillus oryzae genome analysis
Hisashi Kikuchi (Director-General, Biotechnology Center, National Institute of Technology and Evaluation)

15

Oral Session

16

O-1

Ở
麹菌の固体培養特異 的なマンノシ ダーゼ 遺伝子の単離及び解 析Ở赤尾Ở 健、吉内くみ、矢原明典、篠田典子、山田Ở 修、後藤邦康、秋田Ở 修Ở （酒総研・微生物）Ở
Ở
固体培養時の麹菌が示す諸性質の発現機構は興味深い問題である。固体培養特異的に転写を受ける数十個の遺伝子断片 を AOS シリー ズとして 取得してい る 1) 。この うち の AOS22 は 、 A.saitoi の 1,2- α-mannosidaseỞ 遺伝子である msdS などとアミノ酸レベルで高い相同性を有し、固体培養時の他、比較的タ
ンパク分泌量が多いとされる液体培養後期においても転写が認められた。本配列の由来する遺伝子が、N 結合型糖鎖のプロセシングを通じて、分泌タンパクの成熟過程に関与する可能性が考えられたので、遺伝子構造を決定するとともに、機能や発現に関して更に検討を加えることとした。Ở
まず、AOS22 をプローブとして EST データベース、ファージライブラリーを利用して遺伝子全長を取得
し、構造を決定した。その結果、アミノ酸レベルで近縁種の 1,2-α-mannosidase（classIỞ α-mannosidase）と比較したところ、全域にわたり活性残基などを含めて高い相同性を示したため、本遺伝子を manA と命名した。manA 産物は 510aa 残基から成り、N 末端側に一カ所の膜貫通領域を持つと推定された。Ở
更に最小培地での液体培養において manA の転写と培養上清中のタンパク量の経時的変化をより詳細に調べたところ、培養２日以降で manA の転写が認められ、また上清中のタンパク量も漸増傾向にあった。Ở
Ở また、manAỞ ORF を amyB プロモーター下流に結合した後に麹菌に導入した強制発現株を造成し、活性の確認も行っている。Ở
１）Ở 赤尾、生物工学会２０００年度大会講演要旨集 p.300Ở
Ở
Cloning and analysis of manA that encodes mannosidase-like protein from Aspergillus oryzae
Takeshi Akao, Kumi Yoshiuchi, Akinori Yahara, Noriko Shinoda, Osamu Yamada, Kuniyasu, Goto, Osamu Akita(National Research Institute of Brewing)

O-2

ỞCPY-EGFP を利用した麹菌 Aspergillus oryzae の液胞タンパク missort 変異株の取得Ở
大根田守，有岡Ở 学，北本勝ひこ（東大院農生科・応生工）Ở
Ở
【目的】液胞には生体高分子の加水分解に働く多種類の酵素が含まれている。これらの酵素を細胞外に分泌生産させることができれば，液胞酵素の効率的な産業利用が期待できる。本研究では，酵素生産の宿主として有用な麹菌 AspergillusỞoryzae において，EGFP の蛍光を指標として液胞タンパク missort 変異株を取得することを目的とする。Ở
【方法及び結果】酵母の VPS（VacuolarỞProteinỞSorting）変異株には液胞内を酸性化できないものが含まれている。そこで，EGFP 蛍光が酸性下において著しく低下する性質を利用して 1)，液胞内 pH 調節変異株の取得を試みた。A.Ởnidulans 由来の液胞タンパク CPY（CarboxypeptidaseỞY）と EGFP との融合遺伝
子の発現株の分生子を変異処理し，寒天培地上にコロニーを形成させた。そこから分生子を回収して FACS
解析を行い，EGFP 蛍光の強い分生子を分取した。この操作を繰り返し行い蛍光の強い分生子を濃縮し，singleỞ colony を単離した。これらの変異株に関して表現型の解析を行ったところ，培地の pH などの条件
によって野性株とは異なる生育，菌糸形態，EGFP 蛍光の局在を示すものや，野性株に比べて多くの EGFP
蛍光を分泌するものが含まれていた。また，培地中に CPY-EGFP を分泌する変異株を直接単離する方法も試みており，これらにより得られた株についても液胞タンパク局在性などの表現型の解析を報告する。Ở
1)Ở 大根田ら，日本農芸化学会 2001 年度大会講演要旨集，p125Ở
Ở
Isolation of Vacuolar Protein Sorting Mutants in Aspergillus oryzae Using CPY-EGFP
Mamoru Ohneda, Manabu Arioka, Katsuhiko Kitamoto (Dept. Biotechnol., Univ. Tokyo)

17

O-3
Ở
麹菌 Aspergillus oryzae の新規トラ ンスポゾン様配列（Aot1）とトランスポゼース遺伝子Ở
田中尚子、五味勝也（東北大院農・応生化）、柏木Ở 豊（食総研）Ở
Ở
我々はすでに麹菌 A.Ở oryzae において、α-アミラーゼ（amyA）のプロモーター上流に黒麹菌 A.Ở niger のトランスポゾン（Tan1 ）に高いホモロジーを示す Tao1 配列を見出した。しかし、Tao1 に存在するトラン
スポゼース様遺伝子は、コード領域に stopỞcodon が 7 ヶ所存在しており pseudogene であると考えられた。
今回、新たに麹菌 EST（ExpressedỞ sequenceỞ tag）データベースから A.Ở niger の異なるトランスポゾン（Ant1 ）のトランスポゼースにホモロジーの高い部分配列が見出だされた。EST データベース中に見出されたことから発現し機能していると考えられたので、この新規トランスポゼースを含むトランスポゾンを取得しその構造解析を行った。EST クローンをプローブとしてサザン解析を行ったところ、A.ỞoryzaeỞ RIB40
では２コピー存在していることがわかった。また、同じプローブを用いてプラークハイブリダイゼーションを行い、得られたポジティブクローンの約 5.0-kb の塩基配列を決定した。その結果、Ant1 とは異なり、トランスポゼース遺伝子（tnpA）が TerminalỞinvertedỞrepeat を有するトランスポゾン様配列（Aot1 ）の外側に存在しているという興味深い構造であることがわかった。Ở
ỞNovel transposon-like element (Aot1) and a transposase-encoding gene (tnpA) of Aspergillus oryzae
Naoko Tanaka, Katsuya Gomi (Division of Life Science, Graduate school of Agricultural Science, Tohoku University)
Yutaka Kashiwagi (National Food Research Institute)O-4
ỞAspergillus nidulans における GPI アンカー型キチナーゼ(ChiA)の機能の解析Ở
山崎晴丈、堀内裕之、太田明徳（東大院・農生科・応生工）Ở
Ở
糸状菌 AspergillusỞnidulans の細胞壁の主要構成成分の一つであるキチンは、菌糸状の形態形成・維持を行う上で重要な役割を果たしていると考えられている。我々はこれまでに、A.Ởnidulans における形態形成・維持機構の解明を目的として、キチナーゼに注目してきた。A.Ởnidulans の菌類型キチナーゼ ChiA は、961
アミノ酸よりなる蛋白質であり、N 末端の分泌シグナル、それに続く菌類型キチナーゼによく保存された触媒部位、C 末端側約 620 アミノ酸のセリン、スレオニン、プロリンに富む領域(STP 領域)からなる。chiAと栄養要求性マーカーとして用いられる pyrG との二重変異株の解析から、ChiA は低浸透圧下において菌糸先端生長に重要な役割を担っていることが示唆されていた。また、ChiA を alcA(p)の制御下で高発現させた株では、野生型株に比べ菌体内のキチナーゼ活性が高いことから、ChiA がキチナーゼ活性を有することが示唆された。しかしながら、ChiA のキチナーゼ活性に必須と考えられるアミノ酸残基のうちの一つを変換したものを野生型の ChiA の代わりに発現させた株でも、先述した chiA の破壊株のような表現型は示さなかったことから、ChiA のキチナーゼ活性は、菌糸生長に必須ではないことが示唆された。また、ChiA と
GFP との融合蛋白質は、主に菌糸隔壁及び分岐点に局在することが明らかとなった。さらに、ChiA と GFPとの融合蛋白質は TritonỞ X-114 処理で detergentỞ phase に存在するが、phospholipaseỞ C 処理後では
aqueousỞphase に移動することから、ChiA は GPI アンカーの付加を受けていることが示唆された。これらのことから、ChiA は GPI アンカーを 介して菌糸隔壁及び分岐点に局在化することが示唆された。Ở
Ở
Functional analysis of the GPI anchored chitinase (ChiA) of Aspergillus nidulans
Harutake Yamazaki, Hiroyuki Horiuchi and Akinori Ohta (Dept. Biotechnol., Univ. Tokyo)

18

O-5
Ở
Asexual 子のう菌 Alternaria alternata、Fusarium oxysporum および Pyricularia grisea の交配型遺伝子Ở
有江Ở 力・加藤ハナ・金子Ở 功 1・川部眞登・吉田隆延 2・寺岡Ở 徹（農工大農・1 カリフォルニア大バークリー校・2 東北農業研究センター）Ở
Ở
交配不完全性（asexual）子のう菌である AlternariaỞ alternata （ナシ黒斑病等の病原菌）、 FusariumỞ

oxysporum（トマト萎凋病等の病原菌）および PyriculariaỞ grisea（完全世代：MagnaportheỞ grisea、日本産イネいもち病菌の菌株同士は交配が知られていない）から、菌株の交配型決定と共に、交配初期に機能する交配型遺伝子（MAT）領域を取得し、その構造・発現・機能を近縁ヘテロタリック種のものと比較・解析した。これら３種の asexual 子のう菌とも、交配型遺伝子領域を保持し、その上に交配型遺伝子をコードしていた。その遺伝子構造は近縁交配可能株と類似していた。また、A.Ởalternata および F.Ởoxysporum では交配型遺伝子が発現していることが確認され、さらに、CochliobolusỞheterostrophus での他家発現により A.Ởalternata の交配型遺伝子の機能性が保存されていることが示された。Ở
Ở
Mating-Type Genes in Asexual Ascomycetes, Alternaria alternata, Fusarium oxysporum and Pyricularia grisea
Tsutomu Arie, Hana Kato, Isao Kaneko1, Masato Kawabe, Takanobu Yoshida2 and Tohru Teraoka (Tokyo Univ. ofAgriculture and Technology, 1California Univ. at Berkeley, 2National Agricultural Research Center Tohoku Region )O-6
Ởイネいもち病菌の付 着器形成に関 与する 遺伝子の探索と解析Ở
齋藤憲一郎（農工大連農）、寺岡Ở 徹（農工大農）、山口Ở 勇（理研）、鎌倉高志（理研）Ở
Ở
イネいもち病菌の宿主への侵入に必須である付着器形成に関する分子生物学的解析を行うため、本菌の付着器形成条件下で発現する遺伝子を cDNA サブトラクション法により濃縮し、ライブラリー化した。ライブ
ラリー中のクローンから既知配列との相同性および RT-PCR による発現特異性を調べ、優先的に解析するク
ローンを選択した。その中のひとつクローン A4 について遺伝子破壊株を作出して機能解析を試みたところ、取得した遺伝子破壊株は付着器形成を誘導する人工基質上での付着器形成能を欠損していた。しかし、植物
体上では付着器を形成し、病原性も喪失していなかった。本遺伝子の推定 ORF を決定し、既知遺伝子との相同性を検索したところ、全体的な相同性をもつ配列は見出せなかったが、キチン結合モチーフが認められたことから、本遺伝子を CBP1Ở (ChitinỞ BindingỞ Protein)と命名した。本遺伝子の付着器形成誘導に関わる機能推定のため、遺伝子破壊株についての形質の調査ならびに分子生物学的手法を用いた解析を行った。Ở
Ở
Cloning and Analysis of Genes Related with Appressorium Differentiation in Rice Blast Fungus
K. Saitoh (Tokyo Univ. Agri. and Tech.), T. Teraoka (TUAT), I. Yamaguchi (RIKEN) and T. Kamakura (RIKEN)

19

O-7
Ở
担子菌の有する優れ た芳香族化合 物分解 能を支える分子機構Ở
割石博之、一瀬博文、平塚宣博、田中浩雄（九大院農）Ở
Ở
Ở 白色腐朽担子菌は、地球上で最も難分解性芳香族ポリマーであるリグニンを単独で無機化できる唯一の生物である。それゆえ、リグニン分解を可能とする、他の生物にはない分子機構を有しているはずである。これまでの研究から、白色腐朽菌が細胞外酵素として、リグニンペルオキシダーゼ・マンガンペルオキシダー
ゼ・ラッカーゼといった非特異的に芳香族化合物を一電子酸化する酵素が単離され、不定形高分子であるリ
グニンを効率よく酸化する機構として理解されている。しかし、このラジカル反応を介して生じるリグニン
分解断片は非常に多岐にわたることになる。これら低分子量芳香族化合物の詳細な代謝経路については不明な点も多い。我々は、これまでに 40 を越える低分子量芳香族化合物の詳細な代謝経路を明らかにし、担子菌が優れた分子認識能とそれに応答した代謝機構を有することを推定している。特に、高度に制御された細胞内代謝応答に、他の微生物では考えられないほど多くのシトクローム P450 分子種が関与する可能性が示唆された。近年、一部公開の始まった担子菌ゲノムプロジェクト（DOE/JGI）の結果もあわせ、我々がこれまでに明らかにしてきた担子菌 P450 モノオキシゲナーゼ系の解析結果を紹介する。Ở
Ở
Molecular Mechanism involving P450 Systems for Fungal Degradation of Aromatic Compounds
Hiroyuki Wariishi, Hirofumi Ichinose, Nobuhiro Hiratsuka, & Hiroo Tanaka (Kyushu University)O-8Ở
カルボキシン耐性マ ーカーを用い たシイ タケ(Lentinula edodes)の形質転換Ở
入江俊一*、佐藤利次*、齋藤久美子*、本田与一**、渡辺隆司**、桑原正章**、江井Ở 仁*（*岩手生工研、**京大木研）Ở
ỞỞ シイタケは我が国における重要な食用キノコであり、ダイオキシン等の難分解性の環境汚染物質を分解することのできる白色腐朽菌の一種である。詳細なシイタケの性質解析のためには遺伝子工学的実験手法の開発が重要であり、特に形質転換系の開発は急務である。既に我々はハイグロマシン B 耐性遺伝子を選択マーカーとして用いたシイタケ形質転換系を確立しているが、より多くの実験手法を適用するためには複数の選択マーカーが必要である。一方、我々はヒラタケ iron-sulfurỞproteinỞ(Ip)Ởsubunit 遺伝子由来のカルボキシン耐性遺伝子を選択マーカーとして用いたヒラタケの形質転換についても成功している。しかしながら、この耐性遺伝子を用いることではシイタケの形質転換を成功させることはできなかった。そこで、シイタケから IpỞsubunit 遺伝子をクローン化し、それを用いてシイタケ由来のカルボキシン耐性遺伝子を構築した。新たに得られたカルボキシン耐性遺伝子を用いることでシイタケを従来よりも高効率で形質転換することができた。Ở
ỞTransformation of Lentinula edodes using carboxin resistant marker
Toshikazu IRIE*, Toshitsugu SATO*, Kumiko SAITO, Yoichi HONDA**, Takashi WATANABE**, Masaaki
KUWAHARA** and Hitoshi ENEI* (*Iwate Biotechnol. Res. Center and **Wood Res. Inst., Kyoto Univ.)

20

O-9
麹菌 A. oryzae のフコース特異的レクチンの解析と大量生産Ở
石田博樹、森谷敏康、秦Ở 洋二、川戸章嗣、杉並孝二、安部康久（月桂冠）Ở
Ở
麹菌 A.Ởoryzae は、鉄制限培養条件下において鉄キレート物質であるフェリクリシン固定化カラムとアフィニティーを示す蛋白質を生産する。本蛋白質の部分アミノ酸配列を決定し、これをもとに遺伝子クローニ
ングを行った。本蛋白質は 310 アミノ酸残基をコードしており、４つのイントロンに分断されており、ヒイ
ロチャワンタケのフコースレクチンと約 26%の相同性を示した。麹菌での組み換え生産で得られた蛋白質の解析から本遺伝子は L-フコース特異的レクチンをコードしており、fleA と命名した。本レクチンは臨床試薬としての応用性が高いことから麹菌での高発現系の構築を試みた。fleA 遺伝子を麹菌の高発現プロモータ
ーmelO を用いて A.Ởoryzae の液体培養において発現させた結果、Ở 本遺伝子産物を宿主麹菌の菌体内に主要蛋白質として大量に蓄積させることに成功した。さらなる生産量の増加のために菌体外への分泌生産も試みた。glaB 由来のシグナルペプチド配列のみを用いることにより、液体培養、固体培養ともに目的のレクチンの分泌生産が確認できた。組み換え生産した蛋白質についてレクチン活性を検討したところ、L-フコースに特異的に結合し、マンノース、シアル酸には微弱ながら結合活性が認められた。さらに組み換え蛋白質をカラムに固定化し、本レクチン蛋白質のフコース含有複合糖鎖への結合能を検討した結果、α-1,2 結合に対しては結合能が極めて弱いが、他の結合には同等の結合力が確認された。これらの結果から、麹菌由来フコー
ス特異的レクチンを、臨床分野など幅広い分野へ大量に供給することが可能と期待できる。Ở
Ở
Overproduction and characterization of an A. oryzae fucose-specific lectin
Hiroki Ishida, Toshiyasu Moritani, Yoji Hata, Akitsugu Kawato, Koji Suginami, Yashuhisa Abe (Gekkeikan
sake.co.ltd.)

O-10
麹菌 A. oryzae の P450nor 遺伝子の発現と解析Ở
嘉屋正彦、松村憲吾、東田克也、秦Ở 洋二、川戸章嗣、杉並孝二、安部康久、1高谷直樹、2祥雲弘文（月桂冠・総研、1筑波大・応生化、2東大院・農・応生工）
Ở
Ở 脱窒菌である Fusarium oxysporum の cytochrome P450nor 遺伝子(CYP55A1)は、脱窒及び細胞内 NO 除去に関与している。我々は麹菌 Aspergillus oryzae ࡡ EST ライブラリー中より CYP55A1 遺伝子と相同性の高いクローンを検索し、これをプローブとしてゲノムライブラリーから麹菌の cytochromeP450nor 遺伝子（CYP55A5）をクローニングした。この遺伝子には 408aa をコードする ORF が存在していた。また CYP55A5 遺伝子のプ
ロモーター領域には、硝酸呼吸系に関与するシス因子 NirA と思われる配列が存在し、本遺伝子が硝酸などの窒素源代謝に関与していることが示唆された。F. oxysporum と A. oryzae の P450nor 遺伝子のホモロジーはアミノ酸レベルで 59％であり、一次構造より麹菌の P450nor は nor2 タイプの酵素であることが推定された。
本遺伝子を高発現する麹菌を作製し、本酵素の大量発現を試みた。酵素の精製を行い、諸性質の検討を行ったところ、本酵素は NADH、NADPH の両方を補酵素として利用できるタイプの酵素（nor2）であり、NADH
のみを補酵素として利用する Fusarium 酵素(nor1)とは異なる性質を有していた。
Cloning and molecular analysis of the P450nor gene of Aspergillus oryzae
Masahiko Kaya, Kengo Matumura, Katuya Higashida, Yoji Hata, Akitsugu Kawato, Koji Suginami, Yashuhisa Abe,
1

Naoki Takaya, 2Hirohumi Shoun (Gekkeikan sake.co.ltd., 1Institute of Applied Biochemistry, University of Tsukuba,

Tsukuba, Ibaraki., 2Department of Biotechnology, Graduate School of Agricultural and Life Sciences.)

21

O-11
Ở
糸状菌 Fusarium oxysporum の一酸化窒素還 元酵素遺伝子(CYP55)の発現制御機構Ở
高谷直樹、内村浩正、祥雲弘文*（筑波大・応生化、東大院・農・応生工*）Ở
Ở(目的)ỞFusariumỞoxysporum は、硝酸塩を異化的に代謝し亜酸化窒素ガスを生成する性質(脱窒能)をもつ生物として、真核生物としては初めて発見され、我々によって解析が進められている。一方、この反応過程において、シトクロム P450norỞ (CYP55)は、代謝中間産物である一酸化窒素Ở (NO)Ở の還元に必須な NO 還元酵素であり、NO による傷害から細胞を守る機能を持つ。一連の硝酸代謝系は、低酸素条件下で硝酸塩により誘導される。本報告では、CYP55Ở 遺伝子の転写制御機構についての最近の知見を述べる。Ở
(方法と結果)Ở 過塩素酸耐性を指標に単離した硝酸同化系の転写制御因子の欠損変異株および、大腸菌 lacZ
遺伝子を利用した CYP55 遺伝子プロモーターの機能領域の解析を行った。その結果、CYP55 の硝酸による発現誘導には、AspergillusỞ nidulans で知られる硝酸同化系の正の転写調節因子 NirA の結合配列と類似の配列が寄与することが示された。これは、硝酸の異化と同化とが共通の因子で発現制御されることを示唆する。これに対して、CYP55 の発現はアンモニアで抑制されない点で、硝酸同化系とは異なる。一方、好気条
件下での CYP55 の発現抑制は、酵母で知られる酸素による転写抑制因子 Rox1p の結合配列と類似の配列によることが示された。F.Ở oxysporum は、これら２つの因子によって CYP55 の発現を制御すると考えられる。Ở
Ở
Transcriptional control of nitric oxide reductase gene (CYP55) in the fungal denitrifier Fusarium oxysporum
Naoki Takaya, Hiromasa Uchimura, Hirofumi Shoun* (Applied Biochemistry, University of Tsukuba, Graduate Schoolof Agricultural and Life Sciences, The University of Tokyo*)O-12Ở
ク エ ン 酸 生 産 糸 状 菌 Aspergillus niger に お け る シ ア ン 非 感 受 性 呼 吸 系 酵 素 遺伝 子 （ aox1） の 破 壊 Ở
桐 村光 太 郎 ， 宇 田川 史 仁 ， 木 野邦 器 ， 宇 佐 美昭 次 （ 早大 ・ 理 工 ・ 応化 ）Ở

Ởク エン 酸 生 産 糸 状菌 A .Ở niger ỞWU-2223L の ミ ト コ ンド リ ア 内 に は,チ ト ク ロム 鎖 の 他 に シア
ン お よ び ア ン チ マ イ シ ン Ａ に 非 感 受 性 で サ リ チ ル ヒ ド ロ キ サ ム 酸 （ SHAM） に 感 受 性 の 呼 吸系
が 存在 す る 。 1 ,2) し かも 、 培 養 液 への SHAM の 添 加 によ り 菌 体 の 生育 は 阻 害 さ れず に ク エ ン 酸
生 産量 が 激 減 す る 。2) ま た 、演者 ら は 当 該 呼吸 系 を 触媒 す る 酵 素 alternativeỞoxidase の遺 伝 子も ク ロ ー ニ ン グ し た 。 1 ) 本 研 究 で は 、 当 該 酵 素 遺 伝 子 （ aox1 ） 破 壊 株 を 作 成 し ク エ ン 酸 生 産 に対 する 影 響 を 明 らか に し た 。Ở既 にク ロ ー ニ ン グし た 全 長 2856bp の A.Ở niger 染 色体 遺 伝 子 aox1 よ り 活 性 発現 に 必 要 と考え ら れ る 部 位 を 欠 失 さ せ た 遺 伝 子 破 壊 用 プ ラ ス ミ ド を 用 い て 、 PEG 法 に よ り A.Ở niger Ở
WU-2223LỞ pyrG - 株 の 形 質 転換 を 行 っ た 。得 られ た 形質 転 換 株 に つい て 、サ ザ ン 解 析等 に よ り
aox1 の 破 壊を 確 認 し た 。取 得 し た 遺 伝子 破 壊 株 Δaox1 -1 に つ い て、 シ ア ン 非 感受 性 呼 吸 の消失 とク エ ン 酸 生 産量 の 著 し い 低下 を 明 ら か にし た 。Ở1) K. Kirimura et al., Cur r. Gent., 34, 472-477 (1999)
2) K. Kirimura et al., Biosci. Biotechnol. Biochem., 64, 2034-2039 (2000 )Disruption of the cyanide-insensitive alternative oxidase gene (aox1) in the citric acid-producing
Aspergillus niger.
Kohtaro Kirimura, Fumihito Udagawa, Kuniki Kino, Shoji Usami (Dept. Appl. Chem., School of Science& Engineer., Waseda Univ.)

22

O-13
Ở
新規 Zn 結合モチーフをもつ耐熱性デューテロリシン(DLN)遺伝子の大 量発現系の構築、DLN の特異性、CoDLN のメタルセンターỞ
土井ゆうこ、李Ở 秉魯、池口雅道、大庭裕範＊、生駒忠昭＊、手老省三＊、山内清語＊、高橋幸資＊＊、一島英治（創価大学大学院工学研究科、＊東北大学多元物質科学研究所、＊＊東京農工大学農学部）Ở
Ở
Ở DLN(ỞECỞ3.4.24.39)は、AspergillusỞoryzae が分泌生産する亜鉛金属プロテアーゼであり、分子質量は 19.8Ở
kDa で 3 つの S-S 結合を有し、100℃処理後、かなりの残存活性がある。現在までに大腸菌や酵母を宿主に発現されているが、今回 AspergillusỞsaitoiỞ を宿主とした大量発現系の構築を行った。DLN の亜鉛の配位環
境を部位特異的変異によって調べたところ、アスプジンシンと命名した HEXXH+D からなる新規の亜鉛結合モチーフが発見され His128、His132、Asp164 の配位子が確認された。さらに亜鉛イオンをコバルトに置換した DLN(CoDLN)による EPR の測定を行ったところ、歪んだ四面体構造を持つ高スピンコバルト(II)Ở(S=3/2)のジオメトリーが明らかにされた。DLN の基質特異性について、低分子合成基質を用いて詳細に調べたとこ
ろ、塩基性アミノ酸が 2 つ連なったペプチドの C 末端側に特異性があるプロプロテインコンバターゼ様基質
特異性を示すことが明らかにされた。Ở
Ở
Overexpression and specificity of deuterolysin (DLN) with a new zinc binding motif and metal-center of CoDLNỞ
Yuko Doi, Byung Rho Lee, Masamichi Ikeguchi, Yasunori Ohba*, Tadaaki Ikoma*, Shozo Tero*, Seigo Yamauchi*,Koji Takahashi**and Eiji Ichishima(Department of Bioengineering, Graduate School of Soka University, *Institute of Multidisciplinary Research for
Advanced Materials, Tohoku University, **Department of Applied Biological Science, Faculty of Agriculture, Tokyo
University of Agriculture and Technology)

O-14Ở
Aspergillus saitoiỞ1,2-α-D-マンノシダーゼの活性中心構造Ở
多田羅洋太 1、藤田晃子 2、李Ở 秉魯 1、吉田Ở 孝３、高橋幸資 4、一島英治 1Ở （1 創価大院工、2 醸造研、3 東
農工大農、4 弘前大農学生命）Ở
Ở
Ở α-マンノシダーゼは糖タンパク質の糖鎖のプロセシングをする酵素として重要な機能を持つ。糸状菌
AspergillusỞsaitoiỞ の 1,2-α-マンノシダーゼ MSD 遺伝子（msdS）を A.ỞoryzaeỞ を宿主として発現させ、またこれに部位特異的変異を加えることによって活性部位の構造について検討した。すでに酵母の発現系で発現した変異酵素の活性中心のアミノ酸残基については調べられているが、発現量が少ないという問題があった。そこで今回は大量発現系として注目される麹菌を用いて変異酵素を発現し検討を加えた。Ở
Ở 変異は 1,2-α-マンノシダーゼのカルボキシル基を持つアミノ酸残基を対象にして行った。A.ỞoryzaeỞ を宿主として発現した変異酵素の活性を Man6GlcNAc2-PA により測定した。この結果 Glu124Gln、Glu273Gln、Glu504Gln の変異酵素はそれぞれ活性はほとんど見られなかった。また、A.ỞsaitoiỞ1,2-α-マンノシダーゼ
は従来金属イオンを持たないと考えられていたが、原子吸光による解析の結果、分子 1ỞmolỞ あたり１g 原子の活性に必須の Ca2+イオンを持つことがわかった。それぞれの変異酵素について同様に原子吸光を行った結果、Ca2+イオンを持たなかった。Ở
部位特異的変異実験から、1,2,-α-マンノシダーゼの酸性アミノ酸残基の役割として、活性中心における触媒残基と Ca2+イオンのリガンドについて考察する。Ở
ỞThe structure of catalytic center of 1,2-Ș-D-mannosidase from Aspergillus saitoi
1
Y. Tatara, 2A. Fujita, 1B.R. Lee, 3 T. Yosida, 4K. Takahashi, 1E. Ichishima (1Graduate School of Eng., Soka Univ., 2 Res.
Inst. Brewing, 3Dept. of Appl. Biol. Sci., Tokyo Univ. of Agric. Technol., 4Fac. of Agric. Life Sci., Hirosaki Univ.)

23

O-15
Aspergillus nidulansỞα-グルコシダーゼのアミラーゼ発現誘導への関与Ở
加藤直樹、加藤雅士、小林哲夫、塚越規弘（名大院・生命農学）Ở
Ở

Aspergillus 属におけるアミラーゼ遺伝子の発現は、マルトースを始めとした様々なオリゴ糖により誘導される。なかでもイソマルトースは最も優れた誘導能を有しており、低濃度（3ỞµM）でも十分にアミラーゼ
生産を誘導する。マルトースによるアミラーゼ発現誘導はα-グルコシダーゼ阻害剤の添加により阻害されるが、イソマルトースはその影響を受けない。これはマルトースによる誘導にはα-グルコシダーゼ活性が必要であり、その糖転移活性によりマルトースがイソマルトースに変換されることを示唆している。糖転移活性を指標にその変換を担う酵素を精製し、それをコードする遺伝子をクローン化した。本酵素は強力な糖転移活性を有し、系統解析により新規のα-グルコシダーゼであることが明らかとなった。このα-グルコシダーゼ

agdB の他に、A.Ở nidulans は amyR、amyA とクラスターを形成している agdA を有している。α-グルコ
シダーゼのアミラーゼ発現誘導への関与について検討を行うために、agdA、agdB 遺伝子破壊株、および二重遺伝子破壊株を作製し、遺伝子破壊のアミラーゼ発現誘導能に与える影響ついて報告する予定である。Ở
ỞInvolvement of α-glucosidases in amylase induction in Aspergillus nidulans
Naoki Kato, Masashi Kato, Tetsuo Kobayashi, and Norihiro Tsukagoshi (Department of Biological Mechanisms andFunctions, Graduate School of Bioagricultural Sciences, Nagoya University)

O-16
ỞAspergillus nidulans における USO1Ở 相同遺伝子（usoA）の 解析Ở
飯島Ở 隆、中島春紫、北本勝ひこ（東大院農生科・応生工）Ở
Ở
【目的】Aspergillus 属をはじめとする糸状菌は有用物質生産の宿主として注目されているが、蛋白質の細胞内輸送については解析は進んでいない。酵母 S.cerevisiae の USO1 遺伝子は ER-Golgi 間の小胞輸送に必須の遺伝子である。演者らは、糸状菌における細胞内蛋白質輸送機構を解析する目的で A.nidulans から

USO1 ホモログをコードする usoA 遺伝子を単離した。さらに、usoA 条件発現株を作成し、usoA 遺伝子の機能解析を行った。Ở
【方法と結果】usoA 遺伝子のプロモーターを alcA プロモーターに置換し、培地中のＣ源により usoA 遺伝子の発現が制御される変異株を作成した。この変異株は usoA 抑制条件下では生育しなかったことから、

usoA 遺伝子は必須遺伝子と考えられた。また、usoA 誘導培地で生育した株を usoA 抑制条件下に移したところ、菌糸が多分岐になるとともに、先端成長が阻害され、菌糸先端が膨れ上がる異常な形態が観察された。Ở
Ở
Cloning and characterization of the uso1 homologue gene usoA in Aspergillus nidulans
Takashi IIJIMA, Harushi NAKAJIMA, Katsuhiko KITAMOTO
㸝Department of Biotechnology, the University of Tokyo㸞

24

O-17
細胞質ダイニン重鎖 のノックアウ トと糸 状菌の有糸分裂Ở Ở
井上Ở 哲※Ở Ở J.ỞR.ỞAist（所属Ở コーネル大学植物病理学科、※東大・院・医・細胞生物）Ở
Ở
細胞質ダイニンは、微小管に附随する２本の重鎖とダイナクチンを含む数個のコンポーネントからなるタン
パク質複合体で、糸状菌の菌糸内では、核の移動と分布に働く分子モーターとして知られている。有糸分裂における細胞質ダイニンの役割を調べるため、PCRỞ で得た 1.1kbỞ の DNA フラグメントにマーカーとしてハイグロマイシン耐性遺伝子を挿入し、相同組み換えによって 13kbỞ の細胞質ダイニン重鎖遺伝子をノックアウトした NectriaỞhaematococca（無性世代 FusariumỞsolani）の変異株を得た。Ở
上記変異株の生体菌糸中の有糸分裂を位相差及び、微分干渉式ビデオ顕微鏡下で観察したところ、後期 BỞ での両極の移動（紡錘体の伸長）速度が野生株(7.1um)Ở の約半分(3.6um)Ở であり、さらに、レーザーメスで紡錘体を切断する実験結果から細胞質ダイニンは、糸状菌の有糸分裂では、後期 BỞ で、両極を星状体微小管を通して核外から引く力に関与することが証明された。また、微小管の間接蛍光抗体染色法の実験結果から、
星状体微小管の形成にも関与していることが示唆された。Ở
Ở
Knock Out of Cytoplasmic Dynein Heavy Chain and Mitosis of Filamentous Fungi
Satoshi Inoue*, J. R. Aist (Dept of Plant Path, Cornell University, *Dept of Cell Biol, University of Tokyo)

O-18
ỞAspergillus nidulans および Penicillium paxilli の RAD51 ホモログ欠失系統における細胞
外 DNA の組み込み様式Ở
一岡大輔・夏目豊彰・伊藤靖夫（信大・理）Ở
ỞA.Ởnidulans および P.Ởpaxilli における、形質転換時の細胞外 DNA の染色体への組み込み機構を解析するために、出芽酵母 RAD51 のホモログの欠失系統をそれぞれ構築した。本遺伝子の産物は、減数分裂時およびDNA 二重鎖切断(DSB)部位の組み換え修復時に、DNA 鎖間の相同性の検索に主要な役割を果たす。 A.Ở

nidulans では、欠失系統において argB 座における 1.7-kb 断片の相同組み込みが観察されなかった。また、異所的組み込みの結果、染色体上の複数部位に組み込みが起こった形質転換体数が有意に増加した。 P.Ở

paxilli でも、アセトアミド利用性を選択マーカーとした異所的組み込みの場合、欠失系統において、複数部
位に組み込みが起こった割合が有意に増加した。また、この時、逆方向反復配列と同方向反復配列が同程度の頻度で観察された。ジェネティシン耐性をマーカーとした場合、欠失系統において、同方向反復配列の形
成頻度が有意に低下した。以前の知見ともあわせ、RAD51 ホモログが相同的組み込みおよび異所的組み込みに関与すること、染色体上の二重鎖切断が細胞外 DNA の組み込みの主要な基質であることについて議論する。Ở
Ở
Extra-cellular DNA integration in a null mutant of yeast RAD51 homologue in Aspergillus nidulans andPenicillium paxilli.
Ichioka, D., Nastume, T., and Itoh, Y. (Shinshu Univ., Fac. Science)

25

O-19
Ở
白色腐朽担子菌のケ ミカルストレ ス応答Ở
栗原宏征、割石博之＊、田中浩雄＊（九大院生資環・農＊）Ở
Ở
Ở 白色腐朽担子菌は優れた代謝変換能を有し、種々の芳香族性環境汚染物質を分解することで知られている。
今回、dibenzo-p-dioxin をケミカルストレスとし、担子菌のストレス応答機構を追跡した。その結果、ダイオキシンストレスに対し、リグニンペルオキシダーゼ活性の増加、並びに転写レベルでの誘導が確認された。また、ベラトリルアルコール合成量の増加も確認され、LiP 活性の増加を引き起こした一因であることが明らかとなった。さらに、ディファレンシャルディスプレイ法によるストレス誘導性遺伝子の網羅的解析を行った結果、様々な既知タンパク質と高い相同性を示す遺伝子断片が同定された。キノンレダクターゼと高い相同性を示す遺伝子断片が同定されたことから、ダイオキシン分解系との関与が示唆された。ダイオキ
シン以外の化合物による発現誘導を検討したところ、本遺伝子はキノンに対して強く誘導されることが明らかとなった。また、他の担子菌由来 MnSOD と高い相同性を示す遺伝子断片も同時に同定された。5’ỞRACE
法により完全長塩基配列を決定し、大腸菌/pET システムにてタンパク質の発現を行った結果、25ỞkDa の活性型のタンパク質として発現していることが SOD 活性染色により確認された。Ở
ỞChemical stress responsible actions found in white-rot fungus exposed to dibenzo-p-dioxin
Hiroyuki Kurihara, Hiroyuki Wariishi, & Hiroo Tanaka (Kyushu University)

O-20Ở
木材腐朽菌オオウズ ラタケのシュ ウ酸生 合成と共役する新規 炭素代謝機構Ở
島田幹夫、服部武文、ErmanỞMunir,ỞJeongỞJ.ỞYoon,Ở 時松敏明、西出辰徳、（京大木質研）Ở
Ở
木材腐朽菌はシュウ酸を合成し分解する白色腐朽菌とシュウ酸を集積する褐色腐朽菌に２大別される。この相違点は両者のリグニン分解能力の相違点とも関連して進化学的な関心を呼ぶものである。一方、シュウ酸
生合成が腐朽菌の子実体形成時の炭素代謝とも関連する可能性があり、興味深い。このような観点から、褐
色腐朽菌オオウズラタケのシュウ酸生合成酵素系と TCA 回路との関係を調べて行くうちに、通説に反して、グルコース抑制を受けないグリオキシル酸回路が存在することを発見した。共役するこれら２つの回路は新規な炭素代謝機構としてシュウ酸生合成を支え、エネルギーを生成しているメカニズムが解明された【１】。
調節鍵酵素としてイソクエン酸リアーゼ(ICL)が特に重要な役割を果たすが、ICL と新規 flavohemoproteinỞ
glyoxylateỞ dehydrogenaseỞ のỞ cDNA クローニングを試みているのでその結果についても若干報告する。
【１】E.Munir, J. J. Yoon, T.Tokimatsu, T.Hattori, M.Shimada,: Proc.Natl.Acad.Sci. USA (2001) (Sept. issue).
A New Mechanism for Carbon Metabolism Coupling with Oxalate Biosynthesis in Wood -Rotting Fungi
M.Shimada, T.Hattori,E.Munir,.J.J.,Yoon, T.Tokimatsu, and T.Nishide (Wood Research Institute, Kyoto University).

26

O-21
セロビオース脱水素 酵素における 分子内 電子伝達機構の解析Ở
（東大・農生科）五十嵐圭日子、鮫島正浩、（日医大・一生化）西野武士ỞỞ
多くの糸状菌はセルロース分解過程において、セルラーゼと総称されるセルロース加水分解酵素群と共にセロビオース脱水素酵素（CDH）という酸化還元酵素を菌体外に生産する。CDH は補欠分子族としてフラビ
ンとヘムを含むフラボヘム蛋白質で、セロビオースおよびセロオリゴ糖の還元末端を酸化してラクトンを生成する反応を触媒し、その反応と共役して比較的酸化還元電位の高い様々な化合物を電子受容体として利用することが知られている。しかし、CDH による基質の酸化と電子受容体の還元という一連の反応においてその反応速度は pH や電子受容体の種類などに大きく依存しており、その原因として二つの補欠分子族間における電子伝達速度が関与していると考えられている。そこで本研究では CDH 分子内におけフラビンとヘムの酸化還元電位を酸化還元滴定およびサイクリックボルタメトリーによって測定するとともに、前定常状態における補欠分子族の還元速度をストップトフロー分光光度計によって測定し、CDH の酸化還元反応機
構を詳細に解析した。Ở
ỞMechanism of intra-molecular electron transfer in cellobiose dehydrogenase(University of Tokyo) Kiyohiko Igarashi, Masahiro Samejima, (Nippon Medical School) Takeshi NishinoO-22Ở
イネいもち病菌にお ける３量体Ｇ タンパ ク質βサブユニット の機能Ở
西村麻里江（生物研）,ỞJin-RongỞXuỞ(PurdueỞUniversity)Ở
Ở
イネいもち病菌は胞子からイネ上で発芽管を伸ばし、その先端に付着器を形成し、ここからイネ細胞へ侵入する。付着器形成はいもち病菌が表面の疎水性や堅さを認識することにより開始されると考えられている。Ở
真核生物では細胞外情報の細胞内への伝達には細胞膜に存在する３量体Ｇタンパク質（Gα、Gβ、Gγ）
を介して行われ、外来のシグナル物質が細胞表面のレセプターに結合すると下流で Gαと Gβ・γ複合体に解離され活性型となる。いもち病菌において MAP キナーゼ(PMK1)は付着器形成開始を正に制御していることが知られているが、上流でこれを制御している因子については明らかになっていない。そこで、我々は Gβ・γが出芽酵母同様、MAP キナーゼカスケードを制御している可能性について検討した。PCR でクローニングしてきた Gβ遺伝子を用いたノックアウトコンストラクトにより２種類の Gβミュータントを作製し、その形質について解析を行ったところ、これらのミュータントは AspergillusỞ nidulans の Gβ変異株(SfaDỞ
mutant)と同様に発達した気中菌糸をつくった。また、これらのミュータントでは疎水面上で２４時間培養しても付着器形成がみられず、pmk1 変異株と同様の形質を示した。これらのことから、いもち病菌において Gβ・γ複合体が PMK1Ở pathway を正に制御しており、付着器形成開始シグナルを伝達していると考えられる。Ở
Characterization ofsubunit of heterotrimeric G protein in Magnaporthe grisea.

Marie Nishimura (National Institute of Agrobiological Sciences, Japan) and Jin-Rong Xu (Purdue University, USA㸞

27

O-23
Ở
麹菌 Aspergillus oryzae の発芽分生 子および分生子柄の核動態Ở石Ở 一智、丸山潤一、中島春紫、北本勝ひこỞ （東大院農生科・応生工）Ở
Ở（目的）糸状菌において、核の運搬は、分生子形成および菌糸の極性成長に重要である。糸状菌のモデル生物とされる A.nidulans は単核の分生子を形成し、その核の挙動はよく研究されている。麹菌 A.Ởoryzae は、多核の分生子を形成する。その多核分生子の発芽および多核の分生子を形成している分生子柄の核の挙動についての報告はほとんどない。本研究では、これらの核動態を解析した。Ở
（方法および結果）A.Ởoryzae において HistoneH2B::EGFP 融合タンパク質を発現することで、核を可視化した株を用いた(MaruyamaỞetỞal.,Ở2001)。様々な核数の分生子の発芽を経時的に観察し、核動態を追跡した。
これにより、多核の分生子が、核分裂を伴うことなく、発芽管を形成することが観察された。さらに、共焦点レーザー顕微鏡を用いて、分生子柄中の連続する分生子中の核を可視化したところ、これらの分生子も多核であることが確認された。現在、FACS を用いて、単核分生子のみを形成する変異株の取得を試みている。Ở
Maruyama et al., Biosci. Biotechnol. Biochem., 65(7), 1504-1510, 2001
Nuclear movement during germination and conidiation in Aspergillus oryzaeKazutomo Ishi, Jun-ichi Maruyama,
Harushi Nakajima, Katsuhiko Kitamoto(Department of Biotechnology, The University of Tokyo)

O-24
白麹菌のセルラーゼ ・ヘミセルラ ーゼ及 びその遺伝子Ở
伊藤Ở 清、*皆川Ở 一（酒類総研、*広大院・先端研）Ở
Ở【目的】セルロース・ヘミセルロースは地球上で最も多く存在する有機物質であり、バイオマス資源として注目され、利用開発が研究されている。また、これらの多糖は、穀物細胞壁中にも多量に存在し、原料の有効利用を低下させている。従って、資源を有効に利用するためには、セルラーゼ・ヘミセルラーゼの利用が効果的であると考えられる。既に、白麹菌（AspergillusỞkawachiiỞIFO4308）から多数のセルラーゼ・ヘミ
セルラーゼ遺伝子をクローニングしているが、これらの概要について報告する。Ở
【方法と結果】キシラナーゼについては、酵素を精製し、これに対する抗体を作成した後、イムノスクリー
ニングを行い、３種類の遺伝子（xynA,ỞxynB,ỞxynC）をクローニングしている。エンドグルカナーゼについては、セルロース結合ドメイン（CBD）をコードする DNA フラグメントを PCR でクローニングし、これをプローブとして、エンドグルカナーゼ A（eglA）遺伝子をクローニングし、さらに eglA の cDNA をプ
ローブとして、cDNA 及び染色体 DNA ライブラリーのスクリーニングを行った。cDNA については合計５種類（eglA,ỞB,ỞC,ỞD,ỞE）、染色体 DNA についても対応するものをクローニングした。また、この他にも、別のエンドグルカナーゼ・セロビオハイドロラーゼ・キシロシダーゼ等をクローニングしている。Ở
Ở
Cellulase and hemicellulase genes of white koji mold (Aspergillus kawachii)
Kiyoshi Ito and Hajime Minakawa (Res. Inst. of Brewing, Hiroshima University)

28

O-25
タカアミラーゼ A 遺伝子プロモーターを利用した醤油麹菌セルラーゼ D 遺伝子の高発現Ở
北本則行、松井淳子、安田（吉野）庄子、和久Ở 豊＊（愛知食工技、＊ビオック）Ở
Ở
醤油麹菌 AspergillusỞoryzae のペクチン分解酵素やセルロース分解酵素は、醤油諸味の粘度低下をもたらし、圧搾性を高めることが知られている。我々は、これらの酵素の醤油原料分解特性を解明し、より優れた醤油
麹菌を作り出すことを最終的な目的として、その遺伝子群の解析を行っている。醤油麹菌 A.ỞoryzaeỞKBN616
株の遺伝子ライブラリーより新たにクローニングされたセルラーゼ D 遺伝子は、1486Ởbp の長さで２個のイントロンが存在していると考えられた。本遺伝子には 454 個のアミノ酸がコードされており、そのアミノ酸配列は既知の CBHI のアミノ酸配列と約 60％の相同性が認められた。タカアミラーゼ A 遺伝子プロモータ
ーを用いてセルラーゼ D 遺伝子を発現させたところ、デンプンを炭素源とする培地で高い CBHI 活性を示す
形質転換株が得られた。Ở
本研究は、文部科学省の平成１２年度科学振興調整費による「地域先導研究：カビの酵素高生産能を利用した環境調和型工業プロセス技術の基盤研究」の一環として行ったものである。Ở
Ở
Overexpresion of the A. oryzae cellulase D gene under the control of the Taka-amylase A gene promoter
Noriyuki Kitamoto, Junko Matsui, Shoko Yoshino-Yasuda, Yutaka Wagu㸟, (Food Research Institute, Aichi
Prefectural Government, 㸟Bio'c)O-26
Ở
麹菌キシラン・セル ロース分解酵 素に特 異的な転写因子Ở AoXlnR の機能解析Ở
丸井淳一朗・北本則行＊・田中昭光＊＊・加藤雅士・小林哲夫・塚越規弘（名大院・生命農学Ở ＊愛知食品工技＊
ヒゲタ醤油・研）Ở

＊Ở
Ở 麹菌 AspergillusỞoryzae は、我が国の発酵工業において重要な役割を果たし、アミラーゼ、キシラナーゼ
等、様々な菌体外酵素の分泌能力に優れた有用微生物である。AoXlnRỞ(A.ỞoryzaeỞ XlnR)Ở は、A.Ởoryzae キ
シラナーゼ遺伝子 xynF1 の誘導発現に必須の因子として単離された。971 アミノ酸からなる推定 105Ở kDaの同因子は N 末端側領域に典型的な Zn2Cys6 型 DNA 結合ドメインを有し、A.ỞnigerỞXlnR と 77.5Ở%の同一性を示す。Ở
Ở MalE-AoXlnR 融合タンパク質を用いたゲルシフトアッセイから AoXlnR は xynF1 遺伝子プロモーター内の高親和性、低親和性の二か所の部位にそれぞれ独立して結合することが明らかとなった。更に xynF1::lacZ
融合遺伝子を用いた inỞvivo 解析より、これら二か所の AoXlnR 結合部位はいずれも細胞内で独立して機能し、高親和性結合部位が xynF1 のキシランによる誘導発現のために、より重要であることを明らかにした。
また、AoxlnR 遺伝子破壊株を用いたノーザン解析の結果、麹菌に存在する複数のキシラン分解酵素遺伝子
及びセルラーゼ遺伝子の誘導発現能が消失したことから、AoXlnR はキシラン、セルロースなどの植物細胞壁構成多糖の分解酵素遺伝子群の誘導発現に広く機能する重要な転写因子であることが示唆された。Ở
Ở
Functional analysis of the xylanolytic and cellulolytic transcriptional activator, AoXlnR, in Aspergillus oryzae
Junichiro Marui, Noriyuki Kitamoto*, Akimitsu Tanaka**, Masashi Kato, Testuo Kobayashi, and Norihiro Tsukagoshi(Department of Biological Mechanisms and Functions, Graduate School of Bioagricultural Sciences, Nagoya
University., *Food Reserch Institute, Aichi Prefectural Government., **R&D Department, Higeta Shoyu Co., Ltd.)

29

O-27
Ở
Aspergillus oryzaeỞ カルボキシペプチダーゼ（CPase）遺伝子の多様性Ở
横田正仁、竹内道雄（農工大・農・応生科）Ở
Ở[目的]Ở A.oryzaeỞIAM2640 は、液体培養では高分子型 CPaseỞO、固体培養では低分子型 CPaseỞO-1、O-2を生産する。しかし、これまでこれがプロセシングによるものなのか、遺伝子レベルでの多様性なのかは不明であった。本研究では、低分子型 CPase 遺伝子をクローン化し、低分子型 CPase の構造を明らかにするとともに、既にクローン化されている高分子型 CPaseỞO と比較することにより、A.oryzae における CPaseの遺伝子レベルでの多様性を明らかにすることを目的とする。Ở Ở[方法と結果]Ở A.oryzaeỞ CPaseỞ IỞ cDNA の配列１）をもとにプライマーを作製し、A.oryzaeỞ IAM2640 の
gDNA を鋳型として PCR を行ったところ 800bp の増幅断片が認められた。その増幅断片と CPaseỞ O 遺伝
子はサザンブロットによりハイブリダイズしないことが確認された。その結果、A.oryzaeỞ CPaseỞ は遺伝子レベルで多様性を示していることが明らかになった。この増幅断片をプローブとしてプラークハイブリダイ
ゼーションによりゲノミックライブラリーをスクリーニングした結果、10000 個のうち３個の陽性クローンを得た。現在、その塩基配列決定を試みている。 １）Alexander et al., Appl.Env.Microbiol.,65,3298-3309(1999)
Multiple forms of carboxypeptidase genes from Aspergillus oryzae
Masahito Yokota and Michio Takeuchi (Tokyo University of Agriculture and Technology)

O-28Ở
Aspergillus aculeatus 由来 creA 遺伝子のクローニング，発現，およびセロビオハイド
ロラーゼ I 遺伝子上流域に おける結合部位の解析Ở
加藤朋子，北脇麻紀，川口剛司，炭谷順一，荒井基夫（阪府大院・応生化，先端研）Ở
Ở

AspergillusỞaculeatus のセルラーゼ遺伝子はグルコースにより転写が著しく抑制される．糸状菌のカタボ
ライト抑制は負の制御因子である CREA により調節されていることから，このセルラーゼ遺伝子の制御機構においても CREA が関与していると考えられる．今回はこの制御機構を明らかにするため，A.aculeatus のcreA 遺伝子をクローニングし，大腸菌で発現させた．さらに得られた CREA を用いて A.aculeatus セルラーゼの一つであるセロビオハイドロラーゼ I 遺伝子（cbhI）上流域における CREA 結合部位を解析した．Ở
A.aculeatus の creA 遺伝子は 431 アミノ酸残基（分子量 46,312）よりなる蛋白質をコードする 1,293Ởbp
のイントロンを含まない ORF から成り，その推定アミノ酸配列は A.nidulans，A.niger の CREA とそれぞれ 83%，91％と高い相同性が示された．また N 末端側には２つの ZincỞfingerỞ ドメイン，A/T-rich な配列を有していることが分かった．ZincỞfinger ドメインのみを大腸菌発現ベクターpGEX4T-2 を利用して GST
融合蛋白質として発現させ，GlutathioneỞ SepharoseỞ 4B により電気泳動的に均一に精製した．精製した
GST-CREA を用いて cbhI 遺伝子上流におけるゲルシフト解析を行った結果，cbhI 遺伝子上流 1.6Ởkb に存在する９つの CREA 結合コンセンサス配列のうち-586，-445，-384 の 3 箇所に CREA が強く結合することが明らかとなった．Ở
Ở
Cloning and expression of Aspergillus aculeatus creA gene, and its binding to the promoter region ofcellobiohydrolase I gene
Tomoko Kato, Maki Kitawaki, Takashi Kawaguchi, Jun-ichi Sumitani, Motoo Arai (Graduate School of Agricultureand Biological Sciences, and Research Institute of Advanced Science and Technology, Osaka Prefecture University)

30

Poster Session

31

P-1
糸状菌 Aspergillus nidulans のミオシン様ド メインを持つキチン 合成酵素（CsmA）Ở
の菌体内での存在状 態、生産につ いての 解析Ở
竹下典男、堀内裕之、太田明徳（東大院・農生科・応生工）Ở
ỞỞ キチンは糸状菌の細胞壁の主要構成成分の１つであり、その生合成は形態の形成、維持に関わると考えられる。A.Ở nidulans のキチン合成酵素をコードする遺伝子の１つである csmAỞ (chitinỞ synthaseỞ withỞ aỞ
myosinỞ motor-likeỞ domain)はキチン合成酵素ドメインのＮ末端側にミオシン様ドメインを持つ 1852 アミノ酸からなる特異な構造をしたタンパク質をコードしている。 csmA の破壊株では菌糸の途中が膨らむ
balloon の形成、菌糸の中に新たに菌糸が生じる菌糸内菌糸の形成、低浸透圧感受性などが観察される。本研
究は CsmA のタンパク質レベルでの存在状態、生産パターンについての解析を目的とし、csmA の ORF の C
末端に９xHA の tag を繋いだ形のタンパク質（CsmA::9xHA）を発現する株を作製した。HA に対する抗体
で western 解析をおこなったところ予想される約 210Ở kDa の位置にバンドが見られた。CsmA::9xHA の細胞内での分画を行ったところ膜画分にあることが示され、GlycopeptidaseỞF 処理で糖鎖の付加が示されたことから、分泌経路によって輸送されることが示唆された。CsmA::9xHA の菌体内での生産は低浸透圧培地で上昇することが示され、northern 解析の結果よりこの上昇は転写レベルにおいても制御を受けでいることが示唆された。Ở
Ở
Characterization of CsmA (chitin synthase with a myosin motor-like domain) of Aspergillus nidulans
Norio Takeshita, Hiroyuki Horiuchi, and Akinori Ohta (Dept. Biotechnol., Univ. Tokyo)

P-2
ỞAspergillus nidulansỞ の分生子形成に及ぼすキチン合成酵素遺伝 子破壊の影響Ở
一宮維幸、堀内裕之、太田明徳（東大院・農生科・応生工）Ở
Ở
キチンは糸状菌の細胞壁の主成分の１つであり、その生合成は形態の維持、再構成に重要である。当研究室では現在までに A.ỞnidulansỞ から 5 種のキチン合成酵素遺伝子Ở (chsA-D、
csmA)Ở を単離している。Ở chsAỞ

chsCỞ 二重遺伝子破壊株Ở (AC 株)Ở では分生子柄の形態異常、及び分生子形成効率の低下が観察されていた。
分生子形成に関わる転写因子をコードする遺伝子として知られているỞ brlAỞ のある種の変異株、およびỞ

medA の変異株の分生子柄も類似の形態を示すことから、野生型株、brlA 変異株、medAỞ 変異株での chsA、chsCỞ の発現を lacZ をレポーターとして解析した。その結果Ở chsCỞ の発現量はỞ brlAỞ 変異株において低下していたが、chsAỞ の発現量にはいずれの株でも大きな差はみられなかった。一方、medA、brlA の転写量は AC 株では野生型株に比べて減少していた。またỞ ACỞ 株の菌糸細胞壁および隔壁構造には異常がみられた。
以上の結果から細胞壁合成の異常がỞ brlAỞ やỞ medAỞ の転写に影響を与え、分生子柄形成を抑制している可能性が考えられた。出芽酵母においては細胞壁構造の異常を感知し応答する機構が存在する。この機構に関わるỞ PKC1Ở の A.ỞnidulansỞ ホモログと考えられる遺伝子の部分断片を現在までに取得しており、この遺伝子とỞ ACỞ 株の表現型との関連について検討している。Ở
ỞDouble disruption of class I and II chitin synthase genes causes defects in conidiation.
Masayuki Ichinomiya, Hiroyuki Horiuchi, and Akinori Ohta (Dept. Biotechnol., Univ. Tokyo)

32

P-3
Ở
冬虫夏草菌の交配型 遺伝子Ở横山英之 1、伊東達雄２、河内一郎２、中谷善博２、氏田Ở 稔２、原Ở 彰２（名城大・1 農学ハイテク、２生物化学）Ở
Ở【目的】冬虫夏草菌を用いた有用物質生産における問題点として、子嚢果や分生子柄を、大量に生産することが困難な点があげられる。生殖機構の解明は、有用物質生産等の応用面だけではなく、完全体と不完全体の関係を明らかにする基礎的側面からも期待される。Ở
本研究は、冬虫夏草菌の生殖機構の解明を目的として、まず冬虫夏草菌の交配型遺伝子の検討を行った。Ở
【方法と結果】冬虫夏草菌の属する Euascomycetes において、接合型や接合後の分化を制御する 2 つのタ
ンパク質 MAT1 と MAT2 をコードする遺伝子 MAT-1 と MAT-2 が報告されている。既知の MAT1 およびMAT2 において保存されているアミノ酸配列を基にして degenerate プライマーを合成し、冬虫夏草菌

IsariaỞjaponica の染色体 DNA を鋳型とした PCR を行った。PCR 産物の塩基配列を決定した結果、I.Ở
japonicaỞBCMUỞIJ12 株は MAT-2 を、I.ỞjaponicaỞBCMUỞIJ19 株は MAT-1 を保持することが明らかになった。Ở
Ở 以上の結果から、冬虫夏草菌においても MAT1 および MAT2 が存在する事が明らかになり、これらのタンパク質によって交配型や交配後の分化が制御されていることが示唆された。Ở
Ở
Mating-type genes of Isaria japonica
Eiji Yokoyama1, Tatsuo Ito㸧, Ichiro Kawachi㸧, Yoshihiro Nakatani㸧, Minoru Ujita㸧, Akira Hara㸧
(1The Agricultural High-Tech Research Center, 㸧Laboratory of Biological Chemistry, Meijo University)P-4Ở
Aspergillus niger ATCC9642Ở 由来イソプルラ ナーゼにおける糖鎖の役割Ở （第 4 報）Ở
明星裕美、古川貴章、柏木Ở 豊*、殿塚隆史、西河Ở 淳、坂野好幸Ở （農工大応生科、*独法食総研）Ở
Ở

AspergillusỞ nigerỞ ATCC9642 の生産するイソプルラナーゼ（IPU）は多糖プルランに作用しイソパノースを遊離する酵素である。これまでに AspergillusỞ oryzaeỞ M-2-3Ở およびメタノール資化性酵母 PichiaỞ

pastorisỞ GS115 における発現系が構築されている(それぞれ IPU-AO、IPU-PP)。電気泳動の移動度より
IPU-AO は A.Ở niger 由来 IPU の約 2 倍、IPU-PP は約 3 倍の糖含量があることが示された。IPU-AO とA.Ởniger 由来 IPU の性質を比較した結果、糖含量が反応速度に影響を与えることが既に示されている。本研
究は IPU-AO と IPU-PP の比較から、糖含量の増加が IPU へ与える影響を調べ、糖鎖の役割に関する知見を深めることを目的としている。そのために IPU-PP の安定な発現および精製条件を検討し、現在は諸性質を調べている。Ở
Aoki, H., Yopi & Sakano, Y. (1997) Biochem. J. 323, 757-764.
Padmajanti, A., Tonozuka, T. & Sakano, Y. (2000) J. Appl. Glycosci. 47, 287-292.
The role of glycochains for the acitivity of Isopullulanase from Aspergillus niger ATCC9642.
Hiromi Akeboshi, Takaaki Furukawa, Yutaka Kashiwagi*, Takashi Tonozuka, Atsushi Nishikawa & Yoshiyuki Sakano(Department of Applied Science, Tokyo University of Agriculture and Technology, * National Food Research Institute)

33

P-5
Ở
アスペルギルス属糸 状菌の小胞体型 1 ,2-α-マンノシダーゼ活性についてỞ
吉田Ở 孝 1、加藤陽治 2、浅田芳宏 1、中島Ở 佑 3（1 弘前大農学生命、2 弘前大教育、3 東北大院農）Ở
ỞỞ AspergillusỞ oryzeỞ の菌糸よりミクロソーム画分を調製し、界面活性剤存在下でピリジルアミノ化した高マンノース基質（Man9GlcNAc2-PA）に作用させたところ、マンノース１残基を失った Man8GlcNAc2-PAが蓄積した。HPLC による分析から、この Man8 糖鎖はＢ型アイソマー（Man8B）である事が明らかとなった。長時間反応後も反応液中の主要生成物は Man8B 型糖鎖であった。このマンノシダーゼ活性による高マンノース基質のトリミングは最適 pH が 7.0 であり、反応にカルシウムイオンを必要とした。本活性はグリコシダーゼ阻害剤キフネンシンにより阻害され、IC50 は 0.1 マイクロモル以下であった。これらの結果か
ら、本酵素活性はヒトおよび酵母の小胞体に存在する ER-α-マンノシダーゼと同じタイプのものであると考えられた。Aspergillus や Penicillium などの糸状菌は、Man9GlcNAc2 を Man5GlcNAc2 にまでトリミングする 1,2-α-マンノシダーゼを持っている事が既に知られている。これよりアスベルギルス属等の糸状菌は動物細胞と同様に、高マンノース型糖鎖に対する作用様式の異なる２種類の 1,2-α-マンノシダーゼを用いて糖鎖プロセシングを行なっている可能性が示された。Ở
Ở
ER-like 1,2-alpha-mannosidase from a microsomal preparation of Aspergillus oryzae
T Yoshida, Y Kato†, Y Asada, and T Nakajima†† (Faculty of Agriculture and Life Science, and†Faculty of Education, Hirosaki University,††Graduate School of Agricultural Science, Tohoku
University, Japan)

P-6
Aspergillus nidulans の protein O-mannosyltransferase の構造機能解析
岡Ở 拓二、濱口Ở 哲、野中真由子、後藤正利、古川謙介（九大院・生資環・生機科）【目的】࣏ࣤࢿ࣭ࢪ O-型糖鎖は、タンパク質修飾に不可欠なものであり、小胞体に局在する膜貫通型タンパ
ク質 protein O- D-mannosyltransferase (Pmt) によ って ペプ チド 鎖の Ser / Thr 残基 に付 加さ れる 。酵 母
Saccharomyces cerevisiae における O-型糖鎖はマンノースが最大で 5 残基まで直鎖状に伸長するのに対し、Aspergillus 属麹菌においては、1 ~ 3 残基のマンノースがα1,2-結合しているが、α1,3- 及びα1,6-結合による分岐構造も認められる。本報では、酵母とは異なる麹菌の O-型糖鎖合成機構の解明を目的として O-型
糖鎖合成の初発酵素である pmt の構造解析及び機能解析を行った。
【方法及び結果】A. nidulans から pmt と推定される遺伝子 (pmtA) をクローン化した。pmtA は 740 アミノ酸をコードしていた。また、既知の PMT 中では酵母 Pmt2p とそれぞれ 55.3 ％と最も高い相同性を示した。
ࣀ࢕ࢺࣞࣂࢨ࣭ࣈࣞࢴࢹよᯊࡡ⤎ᯕࠉ㓕ẍ Pmtp ࡛␧Ềᛮࣈࣞࣆ࢒࢕ࣜ࠿㓖జࡊ࡙࠷ࡒࠊࡱࡒࠉPmt 㒼า୯ኳ㒂࡞ࡢኬࡀ࡝ばỀᛮࢺ࣒࢕ࣤ࠿Ꮛᅹࡊ࡙࠷ࡒࠊpmtA 破壊株は、マンノーシルトランスフェラーゼ活性が減少した。また、菌糸の途中が膨らむバルーン構造を示し、分生子形成能が低下しࡒࠊStructural and functional analyses of protein O-mannosyltransferase from Aspergillus nidulans.
○Takuji Oka, Tetsu Hamaguchi, Mayuko Nonaka, Masatoshi Goto, Kensuke Furukawa

34

P-7
紅麹菌 MonascusỞanka の形質転 換系の開発Ở
長島Ở 直、板本明咲枝、寺崎容子＊、穴澤秀治＊Ở (新日本化学、＊協和発酵Ở 東京研究所)Ở Ở
Ở
【目的】紅麹菌(Monascus 属糸状菌)は紅色系の色素を著量生産し、古来より中国、台湾などで醸造用麹、
着色着香料の生産菌として用いられており、紅酒、紅乳腐などに利用されている。日本でも沖縄で”とうふよう”と呼ばれる食品の製造に使用されてきた安全な菌株である。また紅麹は消化を助け、血行を良くする
漢方生薬として古来より広く愛用されている。これは紅麹菌が産生する生理活性物質が血圧降下作用およびコレステロールの生合成を抑制する効能を有するからである。Ở
Ở 黄麹菌(A.Ở oryzae)と同様、長い間食用とされてきた極めて安全な糸状菌である紅麹菌(モナスカス属菌)の形質転換については全く知られていない。今回、紅麹菌、MonascusỞ anka の形質転換系を確立し、その系を用いての異種遺伝子の発現を検討したので報告する。Ở
【方法と結果】MonascusỞ ankaỞ IFO30873 のアクティブな斜面培地に 0.01Ở %(v/v)ツィーン 80 を添加し、分生子を集めた。それを選択平板培地（3Ở%スクロース、10ỞmM グルタミン酸、0.2Ở%KH2PO4、0.05%ỞMgSO4･
7H2O、0.05Ở%ỞKCl、470ỞmMỞKClO3、pHỞ5.5）に撒き、28℃で 15-20 日間培養した。生育してきた数株を選択し、硝酸、亜硝酸、グルタミン酸、プロリン、ヒポキサンチン、硫酸アンモニウム等のＮ源をそれぞれ含む平板培地に移植し、その生育性を検討した。結果、選択した株(2-30-4 株)は亜硝酸、グルタミン酸、プ
ロリン、ヒポキサンチン、硫酸アンモニウムをＮ源として資化したが、硝酸は資化できず、取得した株は硝酸還元酵素が欠損(niaD-)していると推測された。さらに 2-30-4 株を宿主とし、A.Ở oryzae の niaD をマーカー遺伝子として形質転換したところ、形質転換株が得られたことより、2-30-4 株は形質転換の宿主として使用できると判断した。次に、M.Ởanka より硝酸還元酵素をコードする遺伝子(niaD)のクローニングを行った。常法に従い M.Ở anka のゲノムライブラリーを作製し、A.Ở oryzae の niaD 遺伝子断片をプローブとしてスクリーニングを行ったところ、8 個のポジティブクローンが得られた。その遺伝子断片の塩基配列を決定した結果、硝酸還元酵素をコードしていると推測された。本遺伝子を M.ỞankaỞ2-30-4 株(niaD-)に導入したところ、homologous に導入されていることが確認された。Ở
Ở 本形質転換系を用いて AspergillusỞ niger のフィターゼ遺伝子(phyA)の発現を検討した。結果、形質転換
株はコントロール株に比べて最大 60 倍のフィターゼを高生産した。Ở
Transformation of Monascus anka with the homologous nitrate reductase encoding gene (niaD)
Tadashi Nagashima, Misaki Itamoto, Yoko Terasaki, Hideharu Anazawa (Shin Nihon Chemical, Kyowa Hakko)

P-8Ở
Aspergillus nidulansỞ の硝酸を利用した嫌気的エネルギー代謝 Ở
高崎一人 1，高谷直樹 1，祥雲弘文 2Ở (1 筑波大・応生化，2 東大院・農・応生工)Ở
Ở
【目的】本研究室において、FusariumỞoxysporumỞ が嫌気条件下でエタノールの酢酸への酸化に伴い硝酸をアンモニアに還元し生育することが発見された。この現象は細菌において知られているのみであり、従来
好気的微生物と考えられている真菌がこのような嫌気的な異化的硝酸還元能を持つことは非常に興味深い。
本研究では遺伝学的解析が容易である A.ỞnidulansỞ を用い、その異化的硝酸還元系の構成成分を解析した。Ở
【方法および結果】A.ỞnidulansỞFGSCỞA26（野生株）をエタノールを唯一の炭素源として嫌気培養したところ、経時的に培地中の硝酸が還元されアンモニアと酢酸が生成した。また、この反応に伴って菌体の増殖が見られた。また、硝酸還元酵素(NiaD)または亜硝酸還元酵素(NiiA)遺伝子の変異株を用い同様に検討した
ところ、各変異が硝酸のアンモニアへの還元を抑制することが示された。以上の結果は A.Ởnidulans の異化
的硝酸還元系に硝酸同化系酵素が関与することを示唆する。一方 A.ỞnidulansỞ では、エタノールは、アセト
アルデヒド、酢酸、acetyl-CoA を経て同化されることが知られている。野生株と比較して alcoholỞ
dehydrogenase の正の発現制御因子Ở (alcR)や acetyl-CoAỞsynthetaseỞ(ỞfacA)遺伝子の変異株では、酢酸とアンモニアの生成が減少したことから、本代謝系へのエタノール同化系の関与が示唆された。現在、aldehydeỞdehydrogenaseỞ(aldA)の関与についても検討中である。Ở

Ở
A novel anaerobic nitrate reducing metabolism by Aspergillus nidulans
Kazuto Takasaki, Naoki Takaya, Hirofumi Shoun* (Applied Biochemistry, University of Tsukuba, Graduate School of
Agricultual and Life Sciences, The University of Tokyo*)

35

P-9
Ở
Fusarium oxysporumỞ におけるアスパラギン酸プロテイナーゼ遺伝子のクローニングと遺伝子破壊Ở吉田隆延（東北農研センター）川部眞登（農工大農）有江Ở 力（農工大農）Ở
Ở
Ở キャベツ萎黄病の病原菌である FusariumỞoxysporumỞf.sp.Ở conglutinans の病原性関連遺伝子を解析する
ため、REMI（RestrictionỞEnzymeỞMediatedỞIntegration）法により約 1,500 菌株の形質転換体を作製し、3 菌株の病原性欠損変異株を得た。その中の 1 株 REMI10 を解析したところ、他の糸状菌で報告されている
アスパラギン酸プロテイナーゼ遺伝子と相同性が高い遺伝子 fap1 の内部に形質転換ベクターが挿入されていることが解った。そこで、fap1 をコスミドライブラリーよりクローニングし、5̀及び 3̀RACE、RT-PCR
を用いて遺伝子構造を決定した。アスパラギン酸プロテイナーゼは他の植物病原菌において、病原性に関与していると推測されているため、fap1 遺伝子破壊ベクターを構築し、二点間相同組換えにより遺伝子破壊を行った。しかし、得られた fap1 破壊株はキャベツへの病原性を欠損しなかった。これより、fap1 は病原性に必須ではなく、REMIỞ10 は REMI 法による形質転換の際に染色体に他の変異が起こり、病原性が欠損したと推測される。Ở
ỞCloning and disruption of a homolog of fungal aspartic proteinase genes from Fusarium oxysporum
Takanobu Yoshida (National Agricultural Research Center for Tohoku Region), Masato Kawabe (Tokyo University ofAgriculture and Technology), Tsutomu Arie (Tokyo University of Agriculture and Technology)

Ở

P-10
Ở
固体培養特異的に発 現する glaB 遺伝子プロモーターの転写因子解析Ở
久田博元、佐野元昭*、石田博樹、秦Ở 洋二、川戸章嗣、町田雅之*Ở (月桂冠・総研、*産総研)Ở
Ở
Ở 麹菌 AspergillusỞ oryzae は様々な酵素を分泌し、産業上重要な微生物である。大半の酵素は固体培養法により生産されるが、当培養法における発現制御機構についてはほとんど解析がなされていない。そこで、固体培養特異的に発現する glaB 遺伝子に注目し、転写因子についてゲルシフト解析を行ったので報告する。Ở
Ở はじめに glaB 遺伝子が発現する固体培養から、WCE（wholeỞcellỞextracts）の調製を試みた。様々な破砕法を試みたところ、ガラスビーズによる破砕法が最適であった。プロモーターの GUS レポーター解析から 1)、Ở 制御に関与するとされる領域 RegionỞ A（GC-box と HSE を含む）と RegionỞ C（RegionỞ IIIa 類似
配列含む）のプローブを作成し、ゲルシフト解析を行ったところ、RegionỞ AỞ のみシフトバンドが検出された。このシフトバンドは液体培養から調製した WCE では検出されなかったことから、この因子は固体培養時のみに発現していることが判明した。このことは glaB 遺伝子の固体培養特異的発現が転写制御因子レベルで制御されていることを示唆している。現在、フットプリント法により結合領域の特定を試みている。Ở
1)Ishida, et. al., Curr., Genet., 37, 373-379 (2000)
Analysis of regulatory factors for the glaB promoter from Aspergillus oryzae
Hiromoto Hisada, Motoaki Sano*, Hiroki Ishida, Yoji Hata, Akitsugu Kawato, Masayuki Machida*(Gekkeikan Sake Co., Ltd., *AIST)

36

P-11
Ở
スエヒロタケヘテロ 三量体型Ｇ蛋白質αサブユニット ScGP-A,ỞScGP-C の構成的活性型変異による子実 体形成抑制Ở
山岸賢治、木村俊之、鈴木雅博、新本洋士（東北農業研究センター）Ở
Ở
糸状菌において、ヘテロ三量体型Ｇタンパク質αサブユニットは接合、病原性発現などに深く関与している。
Homobasidiomycete であるスエヒロタケにおいては現在数種の遺伝子の存在が報告されており、接合フェ
ロモンレセプターとのリンク、青色光受容への関与などが推定されているが、分子生物学的にその機能を実証した例は少ない。そこで、スエヒロタケにおける三量体型Ｇタンパク質αサブユニットの個別の機能を解析するため、各遺伝子（ScGP-A,B,Ở C）の特定の Gln 残基を Arg 残基に置換し、構成的活性型変異遺伝子を作成した。スエヒロタケハイドロフォービン Sc3、GPDH 遺伝子のプロモーターを用いてスエヒロタケ内で発現させたところ、ScGP-A,ScGP-C 変異遺伝子を強く発現している株において、子実体形成が強く抑制された。この観察は、ScGP-A,ScGP-C 遺伝子が、子実体形成を抑制する機能があることを示唆している。Ở
ỞSuppression of the fruit-body formation by constitutively active mutation of heterotrimeric G protein alphasubunit ScGP-A and ScGP-C in homobasidiomycete, Schizophyllum commune.
Kenji Yamagishi, Toshiyuki Kimura, Masahiro Suzuki, and Hiroshi Shinmoto (National Agricultural ResearchCenter for Tohoku Region)

P-12
ỞFusarium oxysporumỞ 由来フルクトシルアミノ酸オキシダーゼ遺伝子のクローニングとランダム変異導入 による基質特 異性の 変換Ở
炭谷順一，藤原真紀，高橋Ở 守*，古賀晋治*，芳陵一生*、高妻卓司*，川口剛司、荒井基夫Ở
（大阪府大院・応生化，先端研，＊旭化成・診断薬研）Ở
Ở
【目的】糖化アミノ酸オキシダーゼ（FOD）は血液中の糖化タンパクを測定する診断薬として有用な酵素である。血液中の主な糖化タンパクとして糖化アルブミンおよび糖化ヘモグロビンが挙げられるが、前者は糖化リジン（FK）、後者は糖化バリン（FV）を含んでいる。F.Ởoxysporum 由来 FOD は、その両者に反応性を示すが，どちらか一方にのみ作用すれば、糖化アルブミンもしくは糖化ヘモグロビンを特異的に測定することができる。そこで、FOD 遺伝子をクローニングし，大腸菌において発現させ，ランダムに変異を導入して基質特異性を変化させることを試みた．Ở
【方法と結果】部分アミノ酸配列を基にỞ FOD 遺伝子をクローニングした．FODỞ 遺伝子はỞ 52ỞbpỞ のイント
ロンを１つ含む 1378Ở bpỞ からなり，441Ở アミノ酸残基をコードすることがわかった．アミノ酸配列を解析した結果，本Ở FODỞ はỞ AspergillusỞ fumigatus 由来のものとỞ 50.7%，A.Ở terreusỞ 由来のものとỞ 50.6%，
PenicilliumỞ janthinellumỞ 由来のものとỞ 35.0%Ở のホモロジーがあり，Ｎ末端領域にはỞ FAD-bindingỞ
motif，Ｃ末端領域にはサルコシンオキシダーゼの活性部位と相同性のある領域が存在することがわかった．
大腸菌における発現を検討したところ，trcỞpromoterỞ 制御下でỞ 25℃で培養することにより活性発現に成功した．
TaqỞpolymeraseỞ のミスリーディングを誘発させた PCR にて FOD 遺伝子にランダムに変異を導入し、FV にほとんど作用しない変異酵素（K373R）を取得した．さらにこの部位（K373）での最適置換アミノ酸を同定するために部位特異的ランダム変異を行い，得られた５種類の変異酵素について諸性質を検討した．Ở
Ở
Improvement of substrate specificity of fructosyl amino acid oxidase from Fusarium oxysporum.
Jun-ichi Sumitani, Maki Fujiwara, Mamoru Takahashi*, Shinji Koga*, IsseiYoshioka*, Takuji kozuma*, Takashi
Kawaguchi, and Motoo Arai (Div. Appl. Biol. Chem., Grad. Sch. Agric. and Biol. Sci., and Res. Inst. Adv. Sci.
Technol., Osaka Pref. Univ. *Dept. Diagnostics Res. & Dev., Asahi Chemical Industry Co., ltd)

37

P-13
イチゴ黒斑病菌の AF 毒素生合成遺伝子クラスター
八田理恵子 1*・伊藤Ở 芳 1・保崎佳嗣 2・田中孝欣 1・高原浩之 2・田中愛子 1・山本幹博 2 ・秋光和也 3・
柘植尚志 1（1 名大院生農・2 岡山大農・3 香川大農・*現Ở 岩手生工研）

AlternariaỞ alternata には、宿主特異的毒素（宿主植物にのみ毒性を示す第２次代謝産物）を生産する
７種の病原型（pathotype）が存在する。先に、遺伝子タギング法を用いて、ナシ黒斑病菌の宿主特異的 AK
毒素生合成遺伝子クラスターを単離し、６遺伝子（AKT 遺伝子群）を同定した。さらに、サザンブロット解
析によって、これらのうち５遺伝子がイチゴ黒斑病菌（AF 毒素生産菌）とタンゼリン brownỞspot 菌（ACT
毒素生産菌）にも存在することを見出した。なお、これら３病原菌の毒素には共通な部分構造として
9,10-epoxy-8-hydroy-9-methyl-decatrienoicỞacid が存在する。本研究では、AKT 遺伝子をプローブとして、イチゴ黒斑病菌のゲノム DNA コスミドライブラリーを選抜し、AKT 相同配列を含むクローンを単離した。ひとつのクローン（約 40Ởkb）の構造解析によって、６つの推定読み枠（ORF）を検出した。これらのうち３つの ORF の塩基配列は、AKT1 、AKTR および AKT3 と 90％一致し、それぞれ AFT1-1 、AFTR-1 、AFT3-1 と命名した。一方、他の ORF はナシ黒斑病菌の遺伝子クラスターからは見出されていない新規なORF であり、そのうちの一つはイチゴ黒斑病菌にのみ存在する AF 毒素生合成に不可欠な遺伝子（AFTS1と命名）であることを確認した。また、AFT 遺伝子群の染色体分布と AF 毒素欠損変異株の解析によって、AFT 遺伝子クラスターが CD（conditionallyỞdispensable）染色体に分布することを見出した。Ở
The gene cluster involved in AF-toxin biosynthesis of the Strawberry pathotype of Alternaria alternata
R. Hatta1, K. Ito1, Y. Hosaki2, T. Tanaka1, H. Takahara2, A. Tanaka1, M. Yamamoto2, K. Akimitsu3 and T. Tsuge1 Ở(1 Nagoya Univ., 2 Okayama Univ., 3 Kagawa Univ.)P-14
Ở
トマトアルターナリ ア茎枯病菌の宿主特異的 AAL 毒素生合成に関与するポリケチ
ド合成酵素遺伝子Ở赤松Ở 創・尾谷Ở 浩・児玉基一朗（鳥取大農）Ở
Ở
Ở トマトアルターナリア茎枯病菌Ở (茎枯病菌)Ở は、宿主特異的 AAL 毒素を生産する。本毒素は、直鎖状のス
フィンゴシン様構造を有することより、その生合成過程におけるポリケチド合成酵素Ở (PKS)Ở の関与が考えられる。そこで、糸状菌および細菌より単離された PKS 遺伝子のβ-ケトアシル合成酵素Ở (KS)Ở の部分配列を増幅するように設計された縮重 PCR プライマーを用いて、茎枯病菌から AAL 毒素生合成に関与する遺伝子の単離を試みた。得られた PCR 産物の塩基配列を決定した結果、1 つのクローンが、AAL 毒素類縁体であり、GibberellaỞ moniliformis により生産されるマイコトキシンであるフモニシンの生合成に関与する
PKS 遺伝子 FUM5 と高い相同性を有していた。本 PCR 産物をプローブとして各種 A.Ở alternata のゲノム DNA
に対してサザン解析を行ったところ、茎枯病菌においてのみシグナルが検出された。さらに、本 PKS 遺伝子を用いた遺伝子ターゲッティングにより、本遺伝子が毒素生産および病原性発現に必要であることが明らかとなった。そこで、
本 DNA 断片をプローブとして茎枯病菌野生株のゲノムライブラリーをスクリーニングし、糸状菌の PKS 遺伝子において一般的に見い出される KS、AT、DH、ER、KR、ACP の 6 ドメインを有する I 型の PKS 遺伝子 AALPKS を同定した。さらに、病原性および非病原性 A.Ở alternata 菌株の染色体のパルスフィールドゲル電気泳動による解析の結果、AALPKS は、茎枯病菌のみが特異的に保有する 1.0Ở -Mb の小型染色体に座乗していることが明らかとなった。Ở
Ở38

A Polyketide Synthase Gene Required for Biosynthesis of Host-Specific AAL-Toxin in Alternaria alternata Tomato Pathotype
Hajime Akamatsu, Hiroshi Otani and Motoichiro Kodama (Faculty of Agriculture, Tottori University)

39

P-15
Ở
Trichoderma reesei 由来新規 キシラナーゼ 遺伝子(xyn3)のクローニングと誘導発現Ở
岡田宏文、小笠原渉、野川優洋、森川Ở 康（長岡技科大・生物）Ở
Ở
我々は、糸状菌 TrichodermaỞ reesei セルラーゼ高生産株 PC-3-7 において、これまでに存在が知られている XYNỞ I および XYNỞ II とは異なる新規キシラナーゼ（XYNỞ III）を見出し、精製後諸性質を明らかにしてきた。今回さらに xyn3 遺伝子のゲノム DNA および cDNA を単離しその塩基配列を解析したところ、XYNỞ
III は遺伝子内に３つのイントロンを持ちグリコシドハイドロラーゼファミリー10 に属するキシラナーゼに高い相同性を示すことが明らかになった。xyn3 をプローブとしてノーザン解析を行ったところ、PC-3-7
株においては主にセルラーゼの誘導物質であるソホロース、ソルボースおよびアビセルでは発現が認められたが、XYNỞ I および XYNỞII の特異的誘導物質であるキシロース、キシロオリゴマーおよびキシランでは全く発現していないことが明らかとなった。また、PC-3-7 株の親株である QM9414 株においてはサザン解析
で遺伝子の存在は確認されたもののノーザン解析では上記誘導物質いずれでも発現していなかった。このことから xyn3 は T.Ởreesei におけるセルラーゼおよびキシラナーゼの誘導発現制御機構を解析するための好適なモデルとなりうることが期待される。Ở
Ở
Molecular cloning and inductive expression of a novel xylanase from Trichoderma reesei
Hirofumi Okada, Wataru Ogasawara, Masahiro Nogawa, Yasushi Morikawa (Dep. Bioeng., Nagaoka Univ. Technol.)P-16
Ở
麹菌 CCAAT 結合複合体の分 子解剖Ở
田上新次郎・亀井健一・加藤雅士・小林哲夫・塚越規弘（名大院・生命農学）Ở
Ở
CCAAT 配列結合因子は、真核生物において、多数の遺伝子の発現量を増大させる転写促進因子であることが知られている。我々はこれまでに、麹菌 AspergillusỞ oryzaeỞ から CCAAT 配列結合因子(Hap 複合体)のサブユニット遺伝子 AohapB ,C,E を分離し、リコンビナントサブユニットを用いた解析より、麹菌 Hap複合体は、AoHapB,C,E からなる３量体として DNA 結合能を有することを明らかにしてきた。各サブユニ
ットは、酵母から哺乳類に至るまで、高度に保存された領域(コア領域)を有しており、この領域は複合体の形成及び DNA 結合に必須の領域であると考えられている。AoHapB,C,E のコア領域に含まれない領域の、DNA 結合能、転写促進能への関与を解析したので報告する。Ở
部分欠失各サブユニットを大腸菌内で過剰発現させ精製した。この標品を用い、Hap 複合体を再構成し inỞ
vitro における DNA 結合能を解析した。その結果、各サブユニットのコア領域さえあれば DNA 結合活性を有することが明らかとなった。また inỞvivo における機能解析を行うため、A..nidulansỞhapB 欠失株、hapC
欠失株、 hapE 欠失株それぞれに AohapB,C,E Ở の全長及び部分欠失 cDNA を導入した株の、Endo-β-1,4-glucanaseA(EG-A)活性を指標に各サブユニットの転写活性化能に関与している領域を解析した。その結果、AoHapB の C 末側領域、及び、AoHapC の N 末側領域に、麹菌 Hap 複合体の転写促進機能保持に重要な領域が存在することが示唆された。Ở
Ở
Molecular dissection of Aspergillus oryzae CCAAT-binding complex
Shinjiro Tanoue,Kenichi Kamei,Masashi Kato,Tetsuo Kobayashi,and Norihiro,Tsukagoshi(Department of Biological Mechanisms and Functions,Graduate School of Bioagricultural Sciences,Nagoya University)

40

P-17
Ở
Aspergillus nidulans の uvsC 欠失系統におけるメチルメタンスルホン酸感受性の解析Ở
水谷真也・夏目豊彰・伊藤靖夫Ở （信大・理）Ở
Ở

A.Ở nidulans における、形質転換時の細胞外 DNA の染色体への組み込み機構を解析するために、出芽酵母
RAD51 のホモログ、uvsC の欠失系統を構築した。本遺伝子の産物は、減数分裂時および DNA 二重鎖切断(DSB)部位の組み換え修復時に、DNA 鎖間の相同性の検索に主要な役割を果たす。⊿uvsC 系統の表現型を確認するために、メチルメタンスルホン酸(MMS)に対する感受性を検定した。MMS はアルキル化剤であるが、本剤による DNA 損傷の修復は、遺伝学的に DSB 修復系と強く連鎖していることが知られている。⊿

uvsC 系統では、最小培地上でのコロニー形成時に強い感受性が認められたが、分生子の発芽（極性成長）は MMS の影響を受けなかった。すなわち、⊿uvsC 系統では、MMS 存在下でも極性成長への移行は起こる
ものの、その後の菌糸伸長が阻害された。この時、発芽した分生子では、nimH11/bimE7,Ở nimU24/bimE7
二重変異株と同様に、多くの場合、核は１個で菌糸中に位置していた。A.Ở nidulans では、富および貧栄養
条件において、核の分裂と極性成長への移行の協調性に対し、異なった制御機構が存在することが知られている。⊿uvsC 系統についても、MMS 存在下における、これらの協調性の制御機構について、現在、検討を行っている。Ở
Ở
Methyl methanesulfonate sensitivity of an Aspergillus nidulans uvsC null mutannt.
Mizutani, S., Natsume, T., and Itoh, Y (Shinshu Univ., Fac. Science)P-18
Ở
麹菌用 gene trap ベクターによる形質転換Ở鈴木Ở 聡、Ở 柏木Ở 豊（独立行政法人Ở 食品総合研究所＜食総研＞）Ở
Ở
麹菌の遺伝子関連研究では EST 解析が行われ、ゲノムシーケンスの解析が進みつつある。このため遺伝
子機能解析が急務となっている。遺伝学的マーカーが確立されていない麹菌において、geneỞ trap 法は機能未知遺伝子を単離、解析する有効な方法の一つとして挙げられるが、糸状菌での実施例は少ない。そこ
で我々は、麹菌用の 2 種類の geneỞ trap ベクター、pPTR-EGFP 及び pUsCdelPA を新たに作成した。
pPTR-EGFP は選抜マーカーとして ptrA（Takara）、及びレポーターとして egfp（Clontech）を保持する。egfp は宿主で発現するプロモーターを欠き、5’側には spliceỞacceptor 配列を挿入した。また、PolyAỞ
trapỞ ベクターpUsCdelPA は選抜マーカーとして 3’側制御配列を欠いた sC（酒総研）を持つ。麹菌に対して pPTR-EGFP を用いた REMI 法による形質転換の結果約 300 の薬剤耐性株が得られた。任意に選択した変異株のプラスミド挿入部位をサザンハイブリダイゼーションにより確認したところ挿入は
non-homologous に起こっており一ヶ所 1 コピー挿入の株が見られた。また 19 株の形質転換株においてEGFP によるものと考えられる蛍光が蛍光顕微鏡にて観察された。以上より、今回作成した geneỞ trap ベ
クター系は麹菌において有効に作用することが示唆された。今後は観察された蛍光が EGFP に由来することの確認、trap された遺伝子のクローニングを行うとともにさらなる変異株を取得する。Ở
ỞTransformation of Aspergillus oryzae using new gene trap vector
Satoshi Suzuki, Yutaka Kashiwagi (NFRI)

41

P-19
Ở
プロテアーゼ低生産 宿主 Aspergillus niger の開発Ở
幸田明生、峰時俊貴、尾関健二、熊谷知栄子（大関総研）Ở
Ở【目的】アスペルギルス属は分泌生産能力が高く、タンパク質生産宿主として非常に重要である。高等生物
由来異種タンパク質の生産についても多くの報告があるが、一般的にその生産量は非常に低い。その原因の一つとして、培地中における生産物の分解が指摘されている。さて、我々は既に RegionỞIII を用いたタンパ
ク質高発現システムを開発しており、糸状菌由来のタンパク質について良好な結果を得ている 1)。今回は、本システムによる異種タンパク質の生産を目指すにあたり、A.niger におけるプロテアーゼ低生産宿主を取得した。Ở
【方法及び結果】A.niger における主要な酸性プロテアーゼ遺伝子（pepA）のコード領域にある BalỞ I サイ
トに、大腸菌のブレオマイシン耐性遺伝子（選択マーカー）を挿入した変異遺伝子を作製し、A.nigerND48に導入した。得られた pepA 破壊株（A.nigerND48prt42）の菌体外酸性プロテアーゼ活性は、親株の約 15％に低下していた。さらに、A.nigerND48 prt42 に変異処理を施し、約 10000 株についてスクリーニングした
ところ、カゼインを含むプレートにおいて全くハローの形成されない株が得られ、誘導条件下における液体培養での菌体外酸性プロテアーゼ活性は親株の１％以下まで低下していた。また、本株のアミラーゼ生産性
は親株と同等の値を示すことから、分泌経路自体がダメージを受けた結果ではないと推察され、異種タンパ
ク質の生産宿主として有効であることが予想された。Ở
1)Ở 峰時俊貴：化学と生物, 12, 831 (2000)
Development of the mutants with low proteolytic activity in Aspergillus niger
Akio Koda, Toshitaka Minetoki, Kenji Ozeki, Chieko Kumagai

P-20Ở
清酒麹菌Ở (Aspergillus oryzae)Ở の酸性フォスファターゼ生産と性 質Ở
藤田Ở 仁,Ở 山根雄一*,Ở 福田Ở 央**,Ở 木崎康造**,Ở 若林三郎**,Ở 河本正次,Ở 秋Ở 庸裕,Ở 重田征子,Ở 小埜和久
（広大院・先端・生命機能,Ở*(株)醉心山根本店,Ở**酒総研）Ở
Ở【目的】酸性フォスファターゼやフィターゼといった無機リン酸遊離酵素が清酒醪の並行複発酵を促進する
ことが知られている。そこで本研究では、清酒麹菌Ở (AspergillusỞoryzae)Ở が生産する種々の酸性フォスファ
ターゼỞ (ACP)Ở の生産条件及び諸性質を検討し、清酒醸造におけるそれらの役割について論じる。Ở
【方法及び結果】A.ỞoryzaeỞRIB-128 を供試菌株とし、Czapec-DoxỞ 培地を基本培地として液体培養を行った。ACP 活性は、p-ニトロフェニル(PNP)リン酸を基質とし、pHỞ 4、30Ở ℃で 1 分間に 1μmol の PNP を遊離する酵素量を 1 単位とした。培地組成を最適化する事によリ、72Ở 時間の培養で 6.1Ở 単位/ml の ACPを生産した。これら ACP は、3 種が存在しており、各 ACP は異なる pH 反応性を示した。また各 ACP の生産開始時期は異なっており、培養環境に密接に関連していることが示唆された。Ở
ỞProduction and properties of acid phosphatase produced by Aspergillus oryzae.
Jin Fujita, Yu-ichi Yamane*, Hisashi Fukusa**, Yasuzo Kizaki**, Saburo Wakabayashi**, Seiji Kawamoto, Tsunehiro
Aki, Seiko Shigeta, Kazuhisa Ono. (Det. Mol. Biotech., ADSM, Hiroshima Univ., *Suishin Yamane Honten Co.Ltd.,Nat. Res. Ins. Brewig)

42

P-21
Ở
可溶性多糖Ở (Extracellular Soluble Polysaccharide: ESP)による白麹菌酵素の安定化と局在性への影響Ở
岩下和裕、原田Ở 直、下飯Ở 仁、伊藤Ở 清（酒総研）Ở
Ở【目的】これまでに、白麹菌Ở (AspergillusỞ kawachii)Ở が生産する可溶性多糖Ở (ESP)Ở は、β-グルコシダー
ゼを安定化するとともに、本酵素の局在性にも関与することが明らかとなっている。これは、麹菌の酵素生
産および酵素の性質を考える上で非常に重要であるものと思われる。そこで本研究では、ESP の与える影響について、他の白麹菌分泌酵素について検討を行ったので報告する。
【方法と結果】β-グルコシダーゼは、

bglA によりコードされ、液体培養では細胞壁型として菌体細胞壁中に、固体培養では遊離型として培地中に検出される。そこでβ-グルコシダーゼと同様、培養条件により局在性が変動する酵素活性について検索した
ところ、多数の酵素活性が同様の挙動を示した。その中から、まずα-グルコシダーゼを精製し検討を行った
ところ、β-グルコシダーゼ同様、非常に不安定であった。これに対し、ESP を添加すると本酵素は安定に保たれた。また、精製α-グルコシダーゼは細胞壁多糖画分への吸着活性を示したが、この活性は ESP の添加により阻害された。以上のことから、ESP はβ-グルコシダーゼ以外の白麹菌酵素の安定性および局在性にも関与していることが明らかとなった。同様の作用は、白麹菌α-グルコシダーゼについても観察された。Ở
ỞThe extracellular soluble polysaccharide (ESP) from Aspergillus kawachii improves the stability of extracellularenzymes and is involved in their localization.
Kazuhiro Iwashita, Nao Harada, Hitoshi Shimoi, Kiyosi Ito

P-22
Ở
REMI 変異株を用いた Fusarium oxysporum f. sp. lycopersici の病原性関連遺伝子の探索と解析Ở
川部眞登・水谷浩平・寺岡Ở 徹・有江Ở 力（農工大農）Ở
Ở
Ở トマト萎ちょう病菌 FusariumỞoxysporumỞf.Ởsp.Ở lycopersici は土壌伝染性であるため防除困難な重要病原菌である。本菌の病原性発現機構はほとんど解明されていないため、糸状菌に対して有効な形質転換株作出法である RestrictionỞEnzyme-MediatedỞIntegration（REMI 法）(SchiestlỞ etỞal.Ở1991)により作出した
病原性変異株を用いて、病原性関連遺伝子を取得、病原性発現機構を解析することを試みている。本法による形質転換にはハイグロマイシン B 耐性遺伝子をもつ pCSN43 を HindỞIII 等で直鎖化して用い、合計約 1500
株の形質転換株を得た。そのうち 5 株がトマトに対する病原性を喪失、もしくは弱病原性の変異株であった。
うち 2 株（r120 および r579）の pCSN43 挿入部位周辺領域について、それぞれ約 5Ở kb の塩基配列を決定した。r120 および r579 の pCSN43 挿入部位にはそれぞれ、unk1、rmt1（仮称）遺伝子の存在が推定され、

unk1 については PDA 培地上での野生株培養菌体の全 RNA を鋳型とした RT-PCR により発現も確認された。Ở
Ở
Study on pathogenicity related-gene of Fusarium oxysporum f. sp. lycopersici using REMI mutants
M. Kawabe, K. Mizutani, T. Teraoka and T. Arie (Tokyo University of Agriculture and Technology)

43

P-23
Ở
Aspergillus oryzae の生産する主要なキシラ ナーゼ XynG2 遺伝 子プロモータ ー領域の解析Ở
松岡寿保、木村哲哉、粟冠和郎、大宮邦雄（三重大生物資源）Ở
Ở【目的】産業上重要な AspergillusỞoryzae はキシランを主要な炭素源としたときに、複数のキシラン分解酵素を生産することが知られている。我々はこれらの中で主要なキシラナーゼをコードする xynG2 遺伝子を単離している。A.oryzae における xynG2 の発現制御機構における重要なシス領域の同定を行った。Ở
【方法及び結果】xynG2 のプロモーター上にはキシラン存在下でキシラナーゼ発現を正に制御する転写因子
XlnR のコンセンサス配列が 2 個存在していた。この配列の相互関係を明らかにするために、それぞれのコ
ンセンサス配列に変異を入れた xynG2 のプロモーターを作成した。このプロモーターと大腸菌β-グルクロニダーゼ（GUS）遺伝子をつないだ融合遺伝子を A.oryzaeỞNiaD 遺伝子をマーカーとし、A.oryzaeỞ NiaD
株に導入した形質転換体について各種培養条件での GUS 活性を検討した。その結果 fructose を炭素源とした培養では GUS 発現は見られなっかたが、xylan を炭素源とした培養では GUS 発現において顕著な違いが示された。この結果より正の制御には下流の XlnR 結合配列のほうが影響が大きいことが分かった。さらにこのプロモーターを用いて XlnR 融合タンパクを用いたゲルシフト実験を行ったが、変異による結合性の違いは見られなかった。この結果より融合タンパク質を用いた inỞvitro の実験では転写因子のアフィニティー
の違いを見ることは難しいことが考えられた。Ở
ỞPromoter analysis of the xynG2 gene from Aspergillus oryzae
T.Matsuoka, T.Kimura, K.Sakka and K.Ohmiya (Faculty of Bioresources, Mie University)

P-24Ở
Aspergillus nidulansỞ 由来ヒスチジンキナーゼ遺伝子Ở (tcsB)Ở 発現産物の機能解析Ở
古川健太郎、勝野泰朗、阿部敬悦、中島Ở 佑（東北大院農・応生科）Ở
ỞỞ A.Ở nidulansỞ のỞ ESTỞ データベースをもとに単離したỞ tcsBỞ 遺伝子の発現産物Ở (TcsBp)Ở は、二成分性情報伝達系を構成するキナーゼドメインとレスポンスレギュレータードメインの二つを併せ持つハイブリッド型ヒスチジンキナーゼであると推定された。酵母の浸透圧センサーヒスチジンキナーゼ Sln1pỞ と構造的相同性が高いことから、類似の生物学的機能を有すると考えられた。温度感受性Ở sln1-tsỞ 変異を持つ酵母においてỞ TcsBpỞ を発現させた結果、機能相補性が認められた。推定リン酸化部位の His552Ở 残基及びỞ Asp989Ở 残基のアミノ酸置換変異体は機能相補しなかったことから、TcsBpỞ はヒスチジンキナーゼであることが確認された。また、浸透圧ストレスシグナルをỞ HOG1ỞMAPKỞ カスケードに伝達不可能な酵母Ở sln1Δ sho1ΔỞ 株においてỞ TcsBpỞ を発現させた結果、高浸透圧条件下で生育が認められたことから、TcsBpỞ は浸透圧センサー機
能を持つことが示唆された。次いで、A.Ở nidulansỞ におけるỞ TcsBpỞ の機能を調べるためにỞ tcsBỞ 遺伝子破壊株を取得した。この破壊株は、酵母Ở sln1ΔỞ 変異株とは異なり、致死ではないことから、A.ỞnidulansỞ の浸
透圧調節システム関連のỞ MAPKỞ カスケードは酵母よりも複雑であることが示唆された。Ở
Ở
Functional analysis of a gene, tcsB, encoding a histidine kinase from Aspergillus nidulans
Kentaro Furukawa, Yasuaki Katsuno, Keietsu Abe, and Tasuku Nakajima (Tohoku Univ, Grad. Sch. Agri. Sci.)

44

P-25
焼酎麹菌のα-L-アラビノフ ラノシダーゼ 遺伝子の構造解析Ở
小関卓也、奥田将生、荒巻Ở 功、岩野君夫＊、松澤Ở 洋＊＊(独法･酒総研、秋田県立大･応生、青森大･工)Ở
Ở
【目的】酒類原料穀物は細胞壁の溶解により、その利用率が向上する。植物細胞壁アラビノキシランの分解にはキシラナーゼ、キシロシダーゼなどの基本骨格を分解する酵素のほかに、側鎖を分解するα-L-アラビ
ノフラノシダーゼ、アセチルキシランエステラーゼ、フェルロイルエステラーゼ、α-グルクロニダーゼなどの酵素も必要とされている。キシランの側鎖がキシラン分解に及ぼす影響とそれを分解する酵素群の役割に
つ い て 明 ら か に す る こ と を 目 的 と し 、 焼 酎 麹 菌 AspergillusỞ awamoriIF04033 お よ び AspergillusỞ
kawachiiIFO4308 のα-L-アラビノフラノシダーゼについて検討を行った。Ở
【方法および結果】両菌株のα-L-アラビノフラノシダーゼは、L-アラビノースや L-アラビトールで誘導生産され、グルコースで抑制された。両菌株から２種類ずつのα-L-アラビノフラノシダーゼを精製し、諸性質を検討した。N-末端アミノ酸配列および A.Ở niger のそれぞれの酵素遺伝子の情報を元にプライマーを合成し、染色体 DNA を鋳型として PCR を行った。得られた断片の塩基配列に基づいてさらにプライマーを合成し、InverseỞPCR 法により両菌株の 2 つの酵素遺伝子の塩基配列を決定した。2 つの酵素はグリコシルヒ
ドロラーゼファミリー51 および 54 に属するα-L-アラビノフラノシダーゼであることが示唆された。2 つの酵素遺伝子の発現様式について現在解析を行っている。Ở
Ở
Analysis of two α-L-arabinofuranosidase genes from Aspergillus kawachii and Aspergillus awamori
Takuya Koseki, Masaki Okuda, Isao Aramaki, Kimio Iwano*, Hiroshi Matsuzawa**(Natl. Res. Inst. Brewing, *Dept. Biotech., Akita Prefectural Univ., **Dept. Biosci. Biotech, Aomori Univ.)P-26Ở
シイタケ子実体菌褶 部の褐変現象 の解析Ở
佐藤利次、河田真樹、渡辺久敬、入江俊一、平野達也、齋藤久美子、神田勝弘、江井Ở 仁Ở （岩手生工研）Ở
ỞỞ 我々は、褐変しにくい保存性の高いシイタケの育種を目的に、シイタケ子実体菌褶部の褐変現象について解析を行っている。この褐変物質はメラニンと考えられていることから、本研究ではメラニン合成の初期反応に関与しているチロシナーゼとラッカーゼに注目し、解析を行った。はじめに両酵素活性と褐変との関係を、部分変性Ở SDS-PAGEỞ の活性染色により検討した。その結果、チロシナーゼ活性とラッカーゼ活性は、保存中に上昇していることが明らかとなり、褐変との相関関係が認められた。次に両酵素遺伝子をクローニングしたところ、チロシナーゼ遺伝子（tyr）は１種類が単離され、ラッカーゼ遺伝子はỞ lcc1 、lcc2、lcc3Ở の３種類が単離された。それぞれの遺伝子に関して、ノーザン解析を行ったところ、tyrỞ とỞ lcc2Ở が子実体保存中にその転写が上昇していることが明らかとなった。以上の結果から、これらの酵素が保存中にỞ deỞnovoỞ
合成されて活性が上昇することが、褐変の原因になっていることが示唆された。現在、チロシナーゼ遺伝子ỞcDNAỞ 断片のアンチセンス鎖を発現させるベクターを構築し、シイタケに導入して解析を行っている。Ở
Ở
Molecular analysis of browning mechanism in the gill of Lentinula edodes fruit-bodies.
Toshitsugu Sato, Maki Kawata, Hisayuki Watanabe, Toshikazu Irie, Tatuya Hirano, Kumiko Saito, Katsuhiro Kanda
and Hitoshi Enei㸝Iwate Biotech. Res. Center㸞

45

P-27
Ở
Aspergillus nidulansỞ アミラーゼ高生産変異株の解析Ở
赤坂祐樹、佐藤綾子、勝山陽子、加藤直樹、加藤雅士、小林哲夫、塚越規弘（名大院、生命農学）Ở
Ở

AspergillusỞnidulans アミラーゼ高生産変異株である AHP1102 は野生株と比べて約 10 倍のアミラーゼ
活性を有しており、小コロニーを形成する特徴を持つ。本変異株が生産するアミラーゼの N-末端アミノ酸配列の解析から、amyB 遺伝子産物の生産量が顕著に増加していることが明らかとなった。CompetitiveỞ
PCR により amyBỞ mRNA の発現量を定量した結果、野生株と変異株で差が見られなかったことから、ア
ミラーゼ生産量の違いは転写後の段階で起こっていることが示唆された。Ở
コロニーサイズ、アミラーゼ活性を指標としてショットガンクローニングを行い、AHP1102 の変異を相補する遺伝子を取得した。本遺伝子は全長 1340Ở bp からなり、それぞれ 54Ở base からなる二つのイントロンを有していた。本遺伝子産物は 410 アミノ酸からなり、相同性検索の結果、SaccharomycesỞcerevisiaeの SUNỞfamilyỞprotein と高い相同性を示したことから、本遺伝子を sunA と命名した。Ở
ỞCharacterization of an amylase hyper-producing mutant of A. nidulans.
Yuki Akasaka, Ayako Sato, Yoko Katsuyama, Naoki Kato, Masashi Kato, Tetsuo Kobayashi, Norihiro Tsukagoshi(Dept. of Biological Mechanisms and Functions, Grad. Sch. of Bioagricultural Sciences, Nagoya Univ.)P-28
Ở
シイタケにおける外 来遺伝子の発 現Ở
齋藤久美子、佐藤利次、河田真樹、平野達也、八重樫香、江井Ở 仁（岩手生工研）Ở
Ở
我々はこれまで、シイタケにおいて構成的に発現する遺伝子として解糖系のキーエンザイムであるグリセ
ルアルデヒド-3-リン酸デヒドロゲナーゼ遺伝子（gpd）およびキチン合成酵素遺伝子（chs）を単離し、これらのプロモーターを利用した発現ベクターがそれぞれシイタケの形質転換において有用であることを報告した。そこで、2Ở つの遺伝子プロモーターと薬剤耐性遺伝子（hph,Ởbar）をタンデムに組み合わせた外来遺伝子発現ベクター（pChG-bar）を構築し、シイタケに導入して得られた形質転換体の解析を行った。REMI法による形質転換の結果、1Ở 次選抜のハイグロマイシン BỞ 耐性株はコントロールベクターのỞ pLCHS-hphと同程度の効率で得られた。さらにビアラフォスでỞ 2Ở 次選抜を行ったところ、耐性株の割合は 1Ở 次選抜株の約 44%Ở に減少したものの、両薬剤に対する耐性株が得られた。導入遺伝子の発現をỞ RT-PCR により調べた結果、8 株中Ở 5Ở 株に barỞ の発現が認められ、さらに培地中にビアラフォスを添加することで発現誘導されるクローンもみられた。以上の結果から、pChG ベクターがシイタケにおける外来遺伝子の発現に有用である可能性が示された。また、外来遺伝子として DsRed およびシイタケ由来ラッカーゼ１遺伝子（lcc1 ）を挿入したỞ pChGỞ ベクターを構築し、これらによるシイタケの形質転換体について解析を行ったので報告する。Ở
ỞTransgene expression in edible basidiomycete Lentinula edodes.
Kumiko Saito, Toshitsugu Sato, Maki Kawata, Tatsuya Hirano, Kaori Yaegashi and Hitoshi Enei (Iwate Biotech. Res.
Center)

46

P-29
Ở
麹菌 Aspergillus oryzae の Tripeptidyl peptidase 遺伝子(tppA)の単離と解析Ở
金Ở 鋒傑、有岡Ở 学、北本勝ひこ（東大院農生科・応生工）Ở Ở ỞỞ【目的】TripeptidylỞ peptidase(TPP)は蛋白質の N 末端から tripeptides を切り出す酵素であり、ヒトやマ
ウスではリソゾームに局在し、生体内蛋白質の分解に重要な役割を果たしている。本研究では AspergillusỞ

oryzae から TPP をコードしている遺伝子のクローニングを行い、この酵素の機能と酵素学的性質の解析を目的とした。Ở
【方法及び結果】A.oryzae の EST データベースを元にプライマーを設計し、A.oryzae ゲノム DNA に対して PCR を行い、約 350bp のフラグメントを得た。このフラグメントをプローブとして、A.oryzae ゲノムラ
イブラリーからプラークハイブリダイゼーションを行い、得られたクローンについて塩基配列を決定した。Ở Ở
cDNA の塩基配列との比較から、A.oryzae の tppA 遺伝子は 2 つのイントロンを含み、600 アミノ酸からなる蛋白質をコードすることが示された。S.cerevisiae に tppAỞ cDNA を発現させたところ、酵素活性の上昇が認められた。また、TppA-EGFP を発現する酵母では液胞に蛍光が観察された。現在、麹菌において TPPの細胞内局在、高発現及び破壊株の作製を行っている。Ở
Ở
Cloning and characterization of Tripeptidyl peptidase(tppA)gene from A.oryzae
Jin Fengjie,Manabu Arioka ,Katsuhiko Kitamoto (Dept. of Biotechnol., Univ. of Tokyo)

P-30
Ở
EGFP を用いた麹菌 Aspergillus oryzae の ER およびゴルジ体の可視化Ở
菊池聡子，丸山潤一，中島春紫，北本勝ひこ（東大院農生科・応生工）Ở
Ở
【目的】真核細胞のタンパク質分泌経路において，ER は合成されたタンパク質の立体構造の形成および修飾，ゴルジ体は ER から送られてきたタンパク質の修飾や選別を行うオルガネラである。本研究では，異種タンパク質生産の宿主として注目されている麹菌 A.Ở oryzae の生細胞における ER およびゴルジ体の動態を明らかにすることを目的として，これらのオルガネラの可視化を試みた。Ở
【方法と結果】
A.Ởoryzae の BiP をコードする遺伝子 bipA と egfp の融合遺伝子 bipA-egfp を作成し，amyB
プロモーターに連結して A.Ở oryzaeỞ niaD300 株（niaD-）に導入したところ，菌糸内に網目状の構造からなる蛍光が観察された。経時的に観察したところ，この構造体の流動が観察された。また，A.Ở oryzaeỞ ESTỞdatabase を検索したところ，酵母 SaccharomycesỞ cerevisiae の SED5 ，およびヒトの STX5 ，ラットのSTX5 の一部と高い相同性を示す約 400bp の断片を発見した。この配列を元にプローブを作成し，A.ỞoryzaeỞ
genomeỞlibrary から SED5 ホモログをコードする遺伝子を単離し，現在 egfp との融合遺伝子の導入によるゴルジ体の可視化を試みている。Ở
Ở
Visualization of ER and Golgi Apparatus in Aspergillus oryzae by Expression of EGFP
Satoko KIKUCHI, Jun-ichi MARUYAMA, Harushi NAKAJIMA, Katsuhiko KITAMOTO(Department of Biotechnology, The University of Tokyo)

47

P-31
Aspergillus oryzae 解糖系遺伝子 3’-phosphoglycerate kinase (PGK)のプロモーター領域の解析
佐野元昭、戸田智美、久田博元 1)、小川雅裕 2)、高瀬久美子、大山晃弘 3)、五味勝也 4)、秋田Ở 修 5)、秦Ở 洋二 1)、町田雅之 (産業技術総合研究所、1)月桂冠総合研究所、2)サッポロビール、3)アロカ(株)研究所、4)東北大、
5)
酒類総合研究所)
Ở 麹菌 Aspergillus oryzae は日本の発酵産業で幅広く利用されているが、遺伝子発現の柔軟な制御や高発現プ
ロモーターの構築など、転写制御の研究は重要である。我々は既に、解糖系遺伝子 glyceraldehyde-3-phosphate
dehydrogenase (gpd)のプロモーター解析を行い発現調節に重要な領域を決定している 1)。そこで今回、以前の
解析 2)で gpd 遺伝子と発現パターンが同じであることが分かっている pgk 遺伝子に着目して、pgk 遺伝子のプ
ロモーター領域の解析を行ったので報告する。
Ở まず、モチーフ解析を行うために A. niger の pgkA 遺伝子のプロモーター配列の決定を行い、A. oryzae, A.
niger の pgkA ,gpdA４つの遺伝子のプロモーター領域を MEME プログラムを使用してモチーフ検索を行った。
その結果、複数のコンセンサス配列から特に共通性の高い 3 ヶ所の領域を選択し、A. oryzae pgkA のプロモー
ターに含まれるこれら 3 ヶ所の領域を用いてゲルシフト解析を行った。その結果、2 ヶ所の領域でシフトバンドが認められ、このシフトした領域を欠損させ GUS をレポーター遺伝子として解析を行ったところ、開始
コドン上流の-184 から-155 nt が PGK の発現に関与する重要な領域であることが判明した。また、この領域
は GPD でも発現に関与する領域であり、PGK と GPD でこの領域に関与する転写調節因子は同一であることが強く示唆された。
1) International Symposium on Molecular Biology of Filamentous Fungi, Aspergilli p452) K. Nakajima, et al. (2000) Curr. Genet., 37, 322-327.
Analysis of the pgkA promoter from Aspergillus oryzae
Motoaki Sano, Tomomi Toda, Hiromoto Hisada1), Masahiro Ogawa2), Kumiko Takase, Akihiro Ooyama3), Katsuya
Gomi4), Osamu Akita5), Yoji Hata1), Masayuki Machida (AIST, 1)Gekkeikan Co,. Ltd, 2)Sapporo Breweries, 3)Aloka
Ltd, 4) Tohoku Univ., 5)NRIB)

P-32
Ở
Aspergillus oryzae のカルシ ニューリン遺伝子 cnaA のストレス適応における役割Ở
Praveen Rao Juvvadi、有岡Ở 学、中島春紫、北本勝ひこ（東大院農生科・応生工）Ở
Ở
Ở カルモジュリン依存性フォスファターゼであるカルシニューリンは、酵母では pH 恒常性の維持およびス
トレス適応に関与すると考えられている。糸状菌では菌糸生長への関与が知られているが、アルカリ性および塩ストレスへの適応における役割はほとんど明らかになっていない。A.Ở oryzae から単離したカルシニュ
ーリンの触媒サブユニット遺伝子 cnaA には、3 つのイントロンが含まれており、カルモジュリン結合ドメ
インを有する 514 アミノ酸のタンパク質がコードされていた。予想される CnaA タンパク質のアミノ酸配列
は、A.Ởnidulans、ヒト、酵母のカルシニューリン A とそれぞれ 92％、67%、58％の相同性を示した。cnaA遺伝子の cDNA の発現により、酵母のカルシニューリン欠損変異株(Δcmp1Ở Δcmp2)のアルカリ性および高塩濃度存在下における生育感受性が相補された。また、cnaA 遺伝子を amyB プロモーターにより過剰発現させた A.Ởoryzae 株は、アルカリ性および高塩濃度培地における生育が向上するとともに、カルシニューリンを標的とする免疫抑制剤 FK506 への耐性が増大することが観察された。Ở
Ở
A putative role of cnaA the gene encoding the catalytic subunit of calcineurin from Aspergillus oryzae in stressadaptation
Praveen Rao Juvvadi, Manabu Arioka, Harushi Nakajima, and Katsuhiko Kitamoto(Dept. of Biotechnology, The University of Tokyo)

48

P-33
Ở
麹菌Ở Aspergillus oryzaeỞ の液胞膜 ATPase 遺伝子の単離と解析Ở
黒木Ở 豊、中島春紫、北本勝ひこỞ (東大院農生科・応生工)Ở
Ở

【目的】A.Ở oryzae のゲノム解析の一環として、種々の培養条件下で発現している遺伝子を検討する目的でExpressedỞSequenceỞTags(ỞESTỞ)解析が進められてきた。演者らは、Ở A.Ởoryzae のアルカリ性環境下における発現遺伝子について解析を行い 1)、液胞膜Ở ATPase をコードする遺伝子のクローニングを行った 2,3)。酵
母 S.ỞcerevisiaeỞ の V-ATPaseỞV1ỞsubunitỞA(Vma1p)は ATP の結合部位を持つ触媒サブユニットであり、V0ỞsubunitỞc(Vma3p)は液胞内部の酸性化に関与する疎水性の 4 回膜貫通タンパク質である。これらの遺伝子の破壊株は共にアルカリ性環境で生育できなくなることが知られている。Ở
【方法と結果】A.ỞoryzaeỞRIB40 をアルカリ条件下(pH10)で cDNA ライブラリーを構築し、約 1000 クロー
ンにつき 5'末端側から塩基配列の決定を行ったところ、複数の V-ATPaseỞV 1ỞsubunitỞA,ỞV0ỞsubunitỞc 遺伝
子と相同性のある配列が見いだされた。この cDNA をプローブとして、A.ỞoryzaeỞ ゲノムライブラリーから
プラークハイブリダイゼーションを行い、それぞれ得られたクローンについて塩基配列を決定した。vmaAとỞ vmaC それぞれ対応する cDNA の全長を S.ỞcerevisiaeỞ の vma1,Ởvma3Ở 破壊株において発現させたとこ
ろ、アルカリ条件下での生育阻害の相補が観察された。また、それぞれ A.ỞoryzaeỞ における遺伝子破壊株を作製し、その表現型を観察したところ vmaA,Ở vmaC 破壊株ともアルカリ培地上での生育遅延や菌糸形態の変化、液胞の形態変化などが観察された。
Ở1)黒木ら、日本生物工学会 2000 年度大会講演要旨集、p.Ở173Ở
2)黒木ら、日本生物工学会 2001 年度大会講演要旨集、p.Ở229Ở3)黒木ら、日本農芸化学会 2001 年度大会講演要旨集、p.Ở364Ở
Ở

Cloning and characterization of vacuolar membrane ATPase genes from A. oryzae 
Yutaka Kuroki, Harushi Nakajima, Katsuhiko Kitamoto, (Dept. Biotechnol., Univ. Tokyo )P-34
Analysis on the Protein Secretion Pathway of Aspergillus oryzae Using EGFP Fusion Protein
Kumiko Masai, Jun-ichi Maruyama, Harushi Nakajima & Katsuhiko Kitamoto(Department of Biotechnology, University of Tokyo)[Objective] Aspergillus oryzae has a long-standing reputation as a secretory "machine" in the production of sake,miso, and soy sauce. However, little is understood about the molecular process of the secretory machinery. Hence,
further knowledge of the secretory pathway of A. oryzae and its enhancement for higher production are of much interest
to the Japanese industry. The objective of this study is to visualize the secretion pattern of the fusion protein
RNaseT1-EGFP when A. oryzae is subjected to conditions of stress and addition of protein pathway inhibitors.
[Method & Results] Conidia of A. oryzae strain NRG1, expressing the fusion protein RntA-EGFP, were inoculated
on DPY (coverslip culture) or modified CD (liquid culture) medium. After the cultures were grown over night,
conditions of stress were applied. Brefeldin A, cytochalasin A or nocodazole was added to the coverslip culture; othercoverslip cultures were subjected to cold or heat shock; and mycelia in liquid cultures were transferred to media withthe appropriate starvation conditions. Post treatment, the resulting fluorescence patterns were observed under the
fluorescent microscope over time. Generally, EGFP lit at the tips and in the supernatant previous to the treatments.
Distinct patterns appeared inside hyphae and the distribution, location and shapes of fluorescence varied with thetreatment applied. The addition of brefeldin A caused ring-like structures that were predicted to be the ER.
Furthermore, small immobile vesicles were retained inside the hyphae in cytochalasin A treated mycelia.
Fluorescence was also found inside vacuoles when mycelia were exposed to cold or heat shock. Consequently, theseobservations would expand the knowledge of this organism in the protein production industry. In addition, the effectsof nutritional stress on the secretion process will be further discussed.

49

P-35
Ở
Woronin bodyỞ 形成に関与する hex-1Ở 相同遺伝子の麹菌 Aspergillus oryzaeỞ からのクローニングと機能解析Ở
丸山潤一、中島春紫、北本勝ひこ（東大院農生科・応生工）Ở
Ở
[目的]Ở WoroninỞbodyỞ は子嚢菌類や不完全菌類の隔壁近傍に見られる構造であり、菌糸が損傷を受けた際、隔壁孔をふさぎ、溶菌が隣接する細胞に伝播するのを防ぐ働きをしている。麹菌は醸造や酵素生産において自己消化することが経験的に知られているが、その分子機構は全く解析されていない。そこで、A.ỞoryzaeỞ のWoroninỞbody の機能とその溶菌の制御機構の解析を試みた。Ở
[方法と結果]Ở A.ỞoryzaeỞESTỞ ライブラリーを検索した結果、NeurosporaỞcrassaỞ の WoroninỞbodyỞ 形成に関与する hex-1Ở 遺伝子と相同なシークエンスが存在した。この配列をもとに、ゲノムならびに cDNAỞ ライ
ブラリーより、遺伝子と cDNAỞ を取得した。シークエンスの結果、遺伝子産物は 176Ở アミノ酸からなると推定され、CỞ 末に PTS1Ở(peroxisomeỞtargetingỞsignal)Ở 配列が存在した。現在、クローニングした遺伝子の機能を明らかにするため、遺伝子破壊株の作成と、EGFPỞ との融合による局在の解析を行っている。Ở
Ở
Cloning and characterization of hex-1 homologue involved in Woronin body of Aspergillus oryzae.
Jun-ichi MARUYAMA, Harushi NAKAJIMA and Katsuhiko KITAMOTO(Department of Biotechnology, The University of Tokyo)

P-36
Aspergillus nidulans における液胞形成関連遺伝子 avaB の解析Ở岡Ở 真如、松田Ở 豊、有岡Ở 学、北本勝ひこ（東大院農生科・応生工）Ở
Ở
【目的】糸状菌が菌糸生長する際の細胞伸長には、液胞による膨圧調節が重要であると推定される。酵母 S.Ở

cerevisiae における液胞形成関連タンパク質 Vam6/Vps39 は、液胞形成の最終ステップである、ホモタイ
プな融合を促進する tethering の役割を果たしている。また、この vam6 変異株は液胞タンパク質の輸送に欠陥を示すとともに、液胞形態の異常も示す。そこで演者らは液胞形態の変化が糸状菌の生育に与える変化を調べ、その機能を明らかにすることを目的とし、A.Ởnidulans から Vam6 ホモログをコードする遺伝子を単離し、その解析を行った。Ở
【方法及び結果】A.Ởnidulans ゲノムプロジェクトの ESTỞdatabase を検索したところ、VAM6 の一部と高い相同性を示す約 600bp の cDNA 断片が見出された。この配列を元にプローブを作製し、 A.Ở nidulansỞ
genomeỞlibraryỞ から VAM6 ホモログをコードすると思われる遺伝子を単離した。この遺伝子の破壊株を作製したところ、細分化した液胞が観察されたため、avaBỞ (AspergillusỞnidulansỞVacuolarỞmorphology)と命名した。Ở
酵母において Vam6 は低分子量 GTPase である Vam4/Ypt7 の GEF として働くことが知られている。糸状菌においても同じ機構が存在するか確かめるため、Vam4 ホモログである AvaA と AvaB の機能的関係について現在調べている。Ở
Ở
Cloning and Characterization of avaB, a Gene for Vacuolar Morphology, in Aspergillus nidulans
Masanao OKA, Yutaka MATSUDA, Manabu ARIOKA, Katsuhiko KITAMOTO(Department of Biotechnology, The University of Tokyo)

50

P-37
Ở
麹菌からのシデロフ ォア生産調節 遺伝子( sre )の単離とその解析Ở
○渡辺久敬、佐藤利次、江井Ở 仁（岩手生工研）Ở
Ở
Ở 麹菌(A.oryzae)はシデロフォアの一種であるフェリクシンを鉄欠乏時に誘導的に分泌することが知られているが、この物質は清酒の潜在的な着色原因となっている。最近、シデロフォア合成系を転写レベルで制御する因子（SRE）の遺伝子が N.crassaỞ および A.nidulansỞ で相次いで単離され、麹菌でのフェリクシン生
産抑制の手段としての利用が期待された。そこで、我々は、麹菌からの同遺伝子ホモログの単離を行うとともに、同遺伝子の機能解析を行った。既知の配列情報をもとに作成したデジェネレートプライマーを用いて、PCR により A.nidulansỞsreA と高い相同性を示す部分 cDNA 断片を得た。この断片をもとに RACE 法により完全長 cDNA を、vectoretteỞ PCR 法によりプロモーターおよびターミネーター領域を含むゲノム DNA
断片を単離した。単離した麹菌のシデロフォア生産抑制遺伝子(sreAo)の推定アミノ酸配列には、sre ホモロ
グに共通して認められる、２つの ZnỞ fingerỞ motifỞ と CysteinỞ richỞ regionỞ が存在した。麹菌の sreAoỞ と

A.nidulansỞsreAỞ とのアミノ酸レベルでの相同性は 69.5％であった。また、sreAo 破壊株は、鉄イオンの有
無に関わらず恒常的にフェリクシンを分泌するように性質が変化した。Ở
Ở
Cloning and characterization of siderophore regulator element gene (sre) from Aspergillus oryzae.
Hisayuki Watanabe, Toshitsugu Sato and Hitoshi Enei (Iwate Biotech. Res. Center)P-38Ở
プロテオーム解析に よる麹菌の酵 素生産 ・分泌条件の検討Ở
長嶺一輝、伊藤Ở 清（酒類総研）Ở
Ở【目的】醸造における麹菌の役割は主に酵素の分泌生産であり、また麹菌による異種タンパク質生産においても、分泌タンパク質の高生産・高分泌が重要なキーポイントとなる。しかし、麹菌の酵素生産は培養条件や菌株により大きく変化するので、醸造等の技術を高度化するには、酵素の生産・分泌条件を詳細に検討しておかなければならない。このための一助とするために、麹菌分泌タンパク質のプロテオーム解析を行った。Ở
【方法と結果】菌株としては、清酒麹菌（AspergillusỞoryzaeỞRIB40）、醤油麹菌（A.ỞoryzaeỞ KBN616）、
焼酎麹菌（A.ỞkawachiiỞIFOỞ4308）を用いた。液体培養ではフスマ抽出液を培地として用い、振とう培養を行った。固体培養ではフスマを培地として用い、恒温恒湿機中で製麹を行った。酵素は 0.5％NaCl を含む酢
酸緩衝液で抽出し、硫安沈殿を行った。プロテオーム解析は、常法通りの２次元電気泳動により行った。麹菌による酵素の生産・分泌は培養条件により大きく変化し、培地組成により変化することは勿論のこと、固体培地と液体培地、培地 pH 等により大きく変化した。また、菌株による差も大きかった。Ở
ỞStudies on the enzyme production by koji molds from the aspects of proteome analysis
Kazuki Nagamine and Kiyoshi Ito (Res. Inst. of Brewing)

51

P-39
Ở
Aspergillus oryzaeỞ アスパルティックプロテイナーゼỞ IỞ(APase I)遺伝子のクローン化Ở
加藤寛貴、横田正仁、竹内道雄（農工大・農・応生科）Ở
Ở【目的】AspergillusỞoryzaeỞvar.globosusỞ M-9 は、２種類のアスパルティックプロテイナーゼ(APase)ỞI・
II を産生することが知られている。しかし２種の APase 間の構造および機能の差異は未だ解明されていない。
本研究では、未知の APaseỞI 遺伝子が APaseỞII とは異なる遺伝子にコードされているのかを明らかにするとともにこの遺伝子をクローン化し、既知の APaseỞII 遺伝子と比較することを目的としている。Ở
【方法と結果】A.ỞoryzaeỞM-9ỞAPaseỞII 遺伝子の塩基配列 1)をもとにプライマーを作製、A.ỞoryzaeỞM-9 の
gDNA を鋳型とし、PCR を試行した。得られた増幅断片を pUC118 にサブクローン化した。APaseỞII 遺伝
子をプローブとしてサザンブロットを行った結果、増幅断片は APaseỞII 遺伝子とハイブリダイズしなかった。
以上の結果から、得られた増幅断片は、APaseỞII とは異なるものであることが確認された。現在、この APaseỞ
I と推定される遺伝子について、その塩基配列の解析を行っている。Ở
１）Takeuchi M et.al. Adv Exp Med biol.1995;362:577-80
Molecular cloning of an aspartic proteinaseI gene from Aspergillus oryzae
Hirotaka Kato,Masahito Yokota and Michio Takeuchi(Tokyo University of Agriculture and Technology)

P-40Ở
Aspergillus aculeatus の新規セルロース分解酵素とその作用Ở
高田悟郎*1・金澤成俊*1・土屋尊子*1・川口剛司*2・荒井基夫*2・何森Ở 健*1（香川大農*1・大阪府大院農*2）Ở
ỞỞ セルロースなどのバイオマス資源を糖化する能力が高い糸状菌 AspergillusỞ aculeatus が培養上清に生産する酵素剤であるアクセラーゼは、様々な成分の多糖分解酵素を含むために農産廃棄物や食品廃棄物、家庭
生ごみなどの資源ゴミに適用でき、酵素反応後に生成する単糖は様々な方面に再資源化できることから、ごみを微生物で処理する前の処理に有望であると考えられる。そこで、本菌が廃棄物を分解する際に生産する蛋白質をプロファイルし、新規のセルロース分解酵素の解析と役割を調べることにした。Ở
まず、培養条件や炭素源を様々にかえて培養し、その培養液および培養液中のセルロース結合画分を二次元電気泳動に供した。次に、既知の酵素のバンドを除いた主要なバンドの N 末端アミノ酸配列を決定した。セルロースに結合する 4 種類の蛋白質のうち、2 種類は N 末端がブロックされて解析できなかった。1 種類はファミリー10 に属するキシラナーゼ、残りの 1 種類はファミリー7 に属するセルラーゼと相同性があった。
さらに、後者のセルラーゼについて解析を進めた。すなわち CBHI-2 は、本菌のファミリー7 の酵素である
CBHI と約 60%のアミノ酸配列の相同性があった。CBHI が A.niger の CbhB と最も高い相同性を示すのに対し、CBHI-2 は A.niger の CbhA と CBD の有無を除き、最も高い相同性を示した。Ở
ỞA New Cellulolytic Enzyme of Aspergillus aculeatus and Its Role.
Takata G., Kanazawa S., Tsuchiya T., Kawaguchi T.*, Arai M.*, and Izumori K. (Faculty of Agriculture, Kagawa
University and Graduate School of Agriculture, Osaka Prefecture University*)

52

P-41
Ở
白麹菌α-アミラーゼの発現様式 Ở
村島健司＊、伊藤Ở 清Ở (酒類総研、＊広大院･先端研)Ở
Ở【目的】白麹菌(AspergillusỞkawachii)では、耐酸性α-アミラーゼとタカアミラーゼ類似のα-アミラ−ゼ(中性α-アミラーゼ)の遺伝子が発現しているが、これらの発現様式は黄麹菌Ở (A.Ở oryzae)のそれとは異なることを既に報告している。今回、遺伝子･タンパク質レベルで詳細に、発現様式の解析を行ったので報告する。Ở
【方法と結果】ノーザン解析、レポーター遺伝子(GUS)解析及び耐酸性α-アミラーゼ抗体を用いたウェスタン解析を行った。耐酸性α-アミラーゼは、固体培養特異的に発現するが、液体培養で酵素活性がほとんど検出されないにもかかわらず、マルトースを炭素源とした時には、強い転写のシグナルが確認され、また GUS 活性も非常に高いレベルを示した。しかし、細胞内外に耐酸性α-アミラーゼタンパク質は検出されなかった。従って、本遺伝子の固体培養特異的発現は、翻訳以降のいずれかのレベルでの制御によることが示唆された。中性
α-アミラーゼは、マルトース・デンプンのほかグリセロールでも発現するが、これはプロモーター領域中の、
regionỞI と呼ばれる部分が欠失していることが原因であると推定している。現在この点について、deletion 実
験等を行って確認している。Ở
ỞCharacterization of -amylase genes from an industrial fungus Aspergillus kawachii
Kenji Murashima, Kiyoshi Ito (Res. Inst. of Brewing, Hiroshima University)P-42Ở
麹菌由来Ở kexinỞ 様プロセッシング酵素の機能解析及び相互作用タンパク質の探索Ở
水谷Ở 治、野島Ở 聡、山本盛真、山形洋平、阿部敬悦、中島Ở 佑（東北大・院農・分子酵素）Ở
Ở Ở
麹菌などの AspergillusỞ 属は、タンパク質分泌能が高く、有用物質生産の宿主として注目されている。本
研究では、未だ明らかになっていない麹菌の分泌タンパク質のプロセッシング機構を解明するために、サチ
ライシン様プロセッシング酵素の機能解析、欠損株の取得、及びその欠損株を用いたプロセッシング酵素と相互作用するタンパク質の解析を行っている。Ở
麹菌Ở ESTỞ データベースよりサチライシン様プロセッシング酵素のクローニングを行い、kexBỞ と名付けた。改良プロモーターの下流に本遺伝子を挿入した高発現ベクターを用いた形質転換により高発現株を取得し、その膜タンパク質画分から塩基性アミノ酸対を含む合成ペプチドを加水分解する活性を確認した。また、
ピリチアミン耐性遺伝子を含むỞ pPTRIỞ ベクターにỞ kexBỞ を導入したプラスミドを用いて、kexBỞ 欠損株を取得した。さらに欠損株を用いてỞ DNAỞ マイクロアレイ、2Ở 次元電気泳動によるプロテオーム解析から本プ
ロセッシング酵素の影響下にあるタンパク質の発現について検討する。Ở
ỞFunctional analysis of kexin-like processing enzyme from Aspergillus oryzae and identificationof its target proteins.
Osamu Mizutani, Akira Nojima, Morimasa Yamamoto, Youhei Yamagata, Keietsu Abe, Tasuku Nakajima (Tohoku
Univ., Grad.Sch.Agri.Sci., Lab.Mol.Enzy.)

53

P-43
Ở
白色木材腐朽菌Ở Phanerochaete chrysosporumỞ のセルロース分解におけるỞ
菌体外糖代謝系につ いてỞ（東大院農）川合理恵、五十嵐圭日子、鮫島正浩、（森林総研）石井Ở 忠ỞỞ
白色木材腐朽菌Ở PhanerochaeteỞ chrysosporiumỞ は、セルロース分解過程において、セルラーゼ、セロビ
オース脱水素酵素(CDH)、β-グルコシダーゼ(BGL)などの酵素を菌体外に分泌することが知られている。しかし、既往の研究においては、可溶性糖の代謝と菌体外で生産されるこれらの酵素活性との関係については述べられていない。そこで本研究では、セルロース分解過程にある P.ỞchrysosporiumỞ の液体培地に中間生成物として考えられる可溶性糖を添加し、菌体外液中のセルラーゼ、CDH、BGL 活性の変化、可溶性糖の同定とその量の変化、培地の pH 等について経日的に調べた。その結果、BGL 活性は他の二つの酵素と全く異なる挙動を示した。さらに、培地中に BGL が十分に機能できるほどのセロビオースが蓄積してこなかったことから、セルロース分解において、菌体外 BGL が関与していないセロビオース代謝経路の存在が示唆された。Ở
ỞExtracellular metabolism of soluble sugars in cellulose degradation by the white-rot fungus Phanerochaetechrysosporium(The University of Tokyo) Rie Kawai, Kiyohiko Igarashi, Masahiro Samejima, (Forestry and Forest Products ResearchInstitute) Tadashi Ishii

P-44
酵母菌 Pichia pastoris において発現させたセロビオース脱水素 酵素の性質Ở吉田Ở 誠、大平Ở 剛、五十嵐ᅽ᪝Ꮔ、長澤寛道、会田ົ⨶、㩢ᓞḿᾀỞ （東大院農）Ở
Ở
白色腐朽菌 PhanerochaeteỞchrysosporium 由来のセロビオース脱水素酵素(CDH)をコードする cDNAを発現ベクターpPIC9K を用いて、メタノール資化性酵母 PichiaỞpastoris に形質転換した。得られた形質転換体を発現培地で４日間培養し、培地から得た菌体外液の CDH 活性を測定したところ、
1800ỞU/L(79Ởmg/L
相当の CDH)が検出された。これは野生株の培養系で得られる CDH 活性よりも高い値であった。組換え体
CDH を電気泳動的に単一になるまで精製した後、スペクトル分析、基質に対する反応速度論的解析、セル
ロースへの吸着能の測定を行ったところ、それらの特性は野生 CDH とほぼ一致した。Ở
ỞỞ
Properties of cellobiose dehydrogenase expressed by the yeast Pichia pastorisỞ
Makoto Yoshida, Ohira Tsuyoshi, Kiyohiko Igarashi, Hiromichi Nagasawa, Aida Katsumi, Masahiro Samejima(University of Tokyo)

54

P-45
Ở
糸状菌Ở Aspergillus nidulans eglAỞ 遺伝子のプロモーター解析Ở
小島美沙子、加藤雅士、小林哲夫、塚越規弘（名大院・生命農学）Ở
Ở【目的】Ở A.ỞnidulansỞ における endo-1,4-β-glucanaseỞ 遺伝子（eglAỞ ）の発現は、CMC、セロビオース
により誘導され、グルコースにより抑制される。eglAỞ プロモーターには広域転写活性化因子Ở HAPỞcomplexỞ
の結合配列Ở (CCAATỞbox)Ở 、TrichodermaỞreeseiỞ のセルラーゼ遺伝子発現に関与する GTAATAỞboxỞ 類似
配列、キシラン分解酵素遺伝子群の転写活性化因子Ở XlnRỞ の結合配列や、炭素源抑制を支配する転写抑制因子Ở CREAỞ の結合配列が存在する。しかし eglAỞ プロモーター上での機能は明らでない。本報告ではこれらの機能解析ならびに新規機能配列の同定を試みた。Ở
【方法と結果】Ở A..Ở oryze 由来タカアミラーゼỞ AỞ 遺伝子Ở (Ở taaG2Ở )Ở をレポーターとし、eglAỞ プロモータ
ー活性を検出した。上記結合配列が欠失・変異した eglAỞ プロモーターをもつ融合遺伝子が A.ỞnidulansỞ のỞargBỞ 座位に 1Ở コピーで導入された株を用いỞ eglAỞ 誘導・非誘導条件下でアミラーゼ活性を測定した。
CCAATỞboxỞ の変異はプロモーター活性の低下を引き起こし、この配列が転写を正に制御することが示唆された。XlnR 結合配列、GTAATAỞboxỞ の変異はプロモーター活性に影響を与えなかった。また 5’Ở 順次欠失
プロモーターの解析の結果、転写開始点上流Ở ̽ 230Ở 付近の配列の欠失により著しい転写活性化能の減少が観察され、新規制御配列の存在が示唆された。Ở
ỞPromoter analysis of the eglA gene of Aspergillus nidulans
Misako Kojima , Masashi Kato , Tetsuo Kobayashi, Norihiro Tsukagoshi (Department of Biological Mechanisms andFunctions, Graduate School of Bioagricultural Sciences, Nagoya University )P-46
Aspergillus oryzaeỞ 由来 Pyrithiamine 耐性遺伝子（ptrA）の利用Ở
窪寺隆文、山下伸雄、西村Ở 顕（白鶴酒造・研究開発室）Ở
Ở
Ở 麹菌 AspergillusỞ oryzae の PyrithiamineỞ (PT)Ở 耐性変異株より単離した耐性遺伝子 ptrAỞ は A.Ở oryzaeの野生株を宿主とした形質転換マーカーとして有用であり 1)、本遺伝子を利用した A.Ở oryzaeỞ および A.Ở

nidulansỞ 形質転換用ベクターが実用化に至っている。今回、A.ỞoryzaeỞ 以外の糸状菌株を対象に ptrA の適用可能性を検討した。PTỞ の最少生育阻害濃度を測定した結果、A.Ởniger,ỞA.Ởkawachii,ỞA.Ởsojae,ỞA.Ởterreus,ỞA.Ởfumigatus,ỞTrichodermaỞreeseiỞ は 0.1Ởmg/lỞ 以下であり、A.Ởoryzae と同様、PT に対して高い感受性を示した。一方、PenicilliumỞcitrinum,ỞFusariumỞsolaniỞ は PTỞ10Ởmg/l 存在下においても抵抗性を示した。Ở
次に PTỞ 感受性を示した A.Ởkawachii,ỞA.Ởterreus,ỞA.Ởfumigatus,ỞTrichodermaỞreesei Ở についてプロトプ
ラスト作成等の形質転換条件を検討し、ptrAỞ を含む組込型または遊離型ベクターで形質転換した。その結果、全ての菌株において PT 耐性を指標に形質転換体を選抜することが可能であった。このことから ptrAỞ は
PT 感受性を示す各種糸状菌株の形質転換マーカーとしても幅広く適用可能と考えられる 2)。Ở1)ỞKubodera, T et al. : Biosci. Biotechnol. Biochem., 64 (7)1416(2000)Ở
2)Ở 窪寺らỞ 日本農芸化学会 2001 年度大会講演要旨集Ở p115Ở
Ở
Application of pyrithiamin resistance gene (ptrA) from Aspergillus oryzae.
Kubodera Takafumi, Yamashita Nobuo, Nishimura Akira (Hakutsuru SAKE Brewing co. Ltd. )

55

P-47
Ở
Penicillium sp. TN-88 株由来エンドおよびエキソ型イヌリナーゼ遺伝子の解析と分子進化Ở
秋元秀俊、森山Ở 聡、中村豊彦、太田一良（宮崎大・農・応生科）Ở
Ở［目的］糸状菌 PenicilliumỞsp.Ở TN-88 株は多糖イヌリンの存在下でのみ誘導的にイヌリナーゼを菌体外に産生する。本報では、作用様式と基質特異性の異なるエンド型とエキソ型のイヌリナーゼをそれぞれコードする遺伝子 inuCỞ とỞ inuDỞ のỞ ORFỞ と上流域を解析し、併せて両遺伝子の分子進化について考察した。Ở
［方法・結果］inuC 遺伝子はイントロンを含まず、アミノ酸 515 残基のタンパク質をコードした。inuD 遺伝子は 59Ở bpỞ のイントロンを１ヶ所保有し、アミノ酸 702 残基のタンパク質をコードした。両遺伝子の上流域には、麹菌アミラーゼ遺伝子で報告されている starch-responsiveỞ elementỞ (5’-GGAAATT-3’)Ở がinuC で は ３ ヶ 所 、 inuD で は １ ヶ 所 、 カ タ ボ ラ イ ト 抑 制 に 関 与 す る タ ン パ ク 質 CreA の 結 合 部 位Ở(5’-SYGGRG-3’)Ở が inuC では１ヶ所、inuD では５ヶ所存在した。近隣結合法により推定アミノ酸配列をもとに作成した分子系統樹は、エンド型イヌリナーゼは細菌レバナーゼに、エキソ型イヌリナーゼは麹菌由来のフルクトース転移酵素にそれぞれ近縁であることを示し、同一菌株由来の関連酵素遺伝子でありながら起源が異なることが示唆された。Ở
Ở
Characterization and molecular evolution of endo- and exoinulinase genes from Penicillium sp. strain TN-88
Hidetoshi Akimoto, Satoshi, Moriyama, Toyohiko Nakamura, Kazuyoshi Ohta (Dept. Biochem. Appl. Biosci.,Miyazaki Univ. )P-48
Ở
糸状菌キトサナーゼ 遺伝子のクロ ーニン グと構造解析Ở
下坂Ở 誠，張Ở 孝勇，宮澤Ở 恭，小平律子，野川優洋，岡崎光雄＊Ở
（信州大・繊維・応生科，信州大・遺伝子実験施設＊）Ở
Ở
【緒言】キチンは糸状菌細胞壁を構成する主要な多糖であるが，一部の菌類では細胞壁キチンが脱アセチ
ル化を受けてキトサンが生じている。この脱アセチル化の意義，およびこれらの株が作るキトサナーゼの役
割は不明である。我々は植物病原菌 FusariumỞ solani および麹菌 AspergillusỞ oryzae が細胞外に分泌するキトサナーゼの酵素学的性質を調べるとともに遺伝子を単離することによりアミノ酸一次配列を決定した。
これら糸状菌キトサナーゼにおける一次配列の相同性から活性ドメインの構造を推定するとともに，キトサ
ナーゼの局在性とその役割について明らかにすることを目指している。Ở
【結果と考察】A.Ởoryzae キトサナーゼのアミノ酸配列は F.ỞsolaniỞ の配列と 45%の相同性を示した。糸状菌
キトサナーゼの一次配列は互いに保存されており，細菌キトサナーゼとは起源を異にすることが明らかとなった。これら糸状菌キトサナーゼに対して，糖質加水分解酵素ファミリー75 の分類が提唱された。F.Ởsolani
キトサナーゼ cDNA の大腸菌における発現系を構築した。インビトロ変異導入法を用いて，糸状菌キトサナーゼにおいてよく保存されている３つのグルタミン酸残基をグルタミンに変換した。その結果，169 番目のGlu を Gln に置換した場合のみ活性が完全に消失したことから，この Glu 残基が活性中心のひとつと推定できた。Ở
Ở Ở Ở Ở Ở Ở Ở Ở Ở Ở
Cloning and Characterization of Chitosanase Genes from Filamentous Fungi
Makoto Shimosaka, Xiao-Yong Zhang, Takashi Miyazawa, Ritsuko Kodaira, Masahiro Nogawa, and Mitsuo Okazaki*(Department of Applied Biology, Faculty of Textile Science and Technology, and *Gene Research Center, Shinshu
University)

56

ெྞ⣬ᘤ
J.ỞR.ỞAist........................................ 25Ở

伊藤靖夫 ................................... 25,Ở40Ở

PraveenỞRaoỞJuvvadi ..................... 47Ở

井上Ở 哲 .........................................25Ở

ErmanỞMunir................................. 26Ở

入江俊一 ................................... 20,Ở44Ở

Jin-RongỞXu.................................. 27Ở

岩下和裕 .........................................42Ở

JeongỞJ.ỞYoon ................................ 26Ở

岩野君夫 .........................................44Ở

会田勝美 ........................................ 53Ở

宇佐美昭次 .....................................22Ở

赤尾Ở 健 ........................................ 17Ở

氏田Ở 稔 .........................................33Ở

赤坂祐樹 ........................................ 45Ở

宇田川史仁 .....................................22Ở

赤松Ở 創 ........................................ 38Ở

内村浩正 .........................................22Ở

秋Ở 庸裕 ........................................ 41Ở

江井Ở 仁 ........................ 20,Ở44,Ở45,Ở50Ở

秋田Ở 修 ................................... 17,Ở47Ở

太田明徳 ................................... 18,Ở32Ở

秋光和也 ........................................ 38Ở

太田一良 .........................................55Ở

秋元秀俊 ........................................ 55Ở

大根田守 .........................................17Ở

明星裕美 ........................................ 33Ở

大庭裕範 .........................................23Ở

浅田芳宏 ........................................ 34Ở

大平Ở 剛 .........................................53Ở

穴澤秀治 ........................................ 35Ở

大宮邦雄 .........................................43Ở

阿部敬悦 ................................... 43,Ở52Ở

大山晃弘 .........................................47Ở

安部康久 ........................................ 21Ở

岡Ở 拓二 .........................................34Ở

荒井基夫 ............................. 30,Ở37,Ở51Ở

岡Ở 真如 .........................................49Ở

荒巻Ở 功 ........................................ 44Ở

岡崎光雄 .........................................55Ở

有江Ở 力 ............................. 19,Ở36,Ở42Ở

小笠原渉 .........................................39Ở

有岡Ở 学 ........................ 17,Ở46,Ở47,Ở49Ở

岡田宏文 .........................................39Ở

飯島Ở 隆 ........................................ 24Ở

小川雅裕 .........................................47Ở

五十嵐圭日子 ............................. 27,Ở53Ở

奥田将生 .........................................44Ở

池口雅道 ........................................ 23Ở

尾関健二 .........................................41Ở

生駒忠昭 ........................................ 23Ở

尾谷Ở 浩 .........................................38Ở

石Ở 一智 ........................................ 28Ở

小埜和久 .........................................41Ở

石井Ở 忠 ........................................ 53Ở

柏木Ở 豊 ..............................18,Ở33,Ở40Ở

石田博樹 ................................... 21,Ở36Ở

勝野泰朗 .........................................43Ở

板本明咲枝 ..................................... 35Ở

勝山陽子 .........................................45Ở

一岡大輔 ........................................ 25Ở

加藤朋子 .........................................30Ở

一島英治 ........................................ 23Ở

加藤直樹 ................................... 24,Ở45Ở

一瀬博文 ........................................ 20Ở

加藤ハナ .........................................19Ở

伊藤Ở 芳 ........................................ 38Ở

加藤寛貴 .........................................51Ở

伊藤Ở 清 ........................ 28,Ở42,Ở50,Ở52Ở

加藤雅士 ...................24,Ở29,Ở39,Ở45,Ở54Ở

伊東達雄 ........................................ 33Ở

加藤陽治 .........................................34Ở
57

金澤成俊 ........................................ 51Ở

後藤正利 .........................................34Ở

金子Ở 功 ........................................ 19Ở

小林哲夫 ...................24,Ở29,Ở39,Ở45,Ở54Ở

鎌倉高志 ........................................ 19Ở

五味勝也 ................................... 18,Ở47Ở

亀井健一 ........................................ 39Ở

齋藤久美子 ...........................20,Ở44,Ở45Ở

嘉屋正彦 ........................................ 21Ở

齋藤憲一郎 ......................................19Ở

川合理恵 ........................................ 53Ở

坂野好幸 .........................................33Ở

川口剛司 ............................. 30,Ở37,Ở51Ở

粟冠和郎 .........................................43Ở

河田真樹 ................................... 44,Ở45Ở

佐藤綾子 .........................................45Ở

河内一郎 ........................................ 33Ở

佐藤利次 ........................ 20,Ở44,Ở45,Ở50Ở

川戸章嗣 ................................... 21,Ở36Ở

佐野元昭 ................................... 36,Ở47Ở

川部眞登 ............................. 19,Ở36,Ở42Ở

鮫島正浩 ................................... 27,Ở53Ở

河本正次 ........................................ 41Ở

重田征子 .........................................41Ở

神田勝弘 ........................................ 44Ở

篠田典子 .........................................17Ở

菊池聡子 ........................................ 46Ở

島田幹夫 .........................................26Ở

菊池Ở 久 ........................................ 14Ở

下飯Ở 仁 .........................................42Ở

木崎康造 ........................................ 41Ở

下坂Ở 誠 .........................................55Ở

北本勝ひこ .... 17,Ở24,Ở28,Ở46,Ở47,Ở48,Ở49Ở

祥雲弘文 ..............................21,Ở22,Ở35Ở

北本則行 ........................................ 29Ở

新本洋士 .........................................37Ở

北脇麻紀 ........................................ 30Ở

杉並孝二 .........................................21Ở

木野邦器 ....................................... 22Ở

鈴木Ở 聡 .........................................40Ở

木村哲哉 ........................................ 43Ở

鈴木雅博 .........................................37Ở

木村俊之 ........................................ 37Ở

炭谷順一 ................................... 30,Ở37Ở

桐村光太郎 .................................... 22Ở

高崎一人 .........................................35Ở

金Ở 鋒傑 ........................................ 46Ở

高瀬久美子 ......................................47Ở

窪寺隆文 ........................................ 54Ở

高田悟郎 .........................................51Ở

熊谷知栄子 ..................................... 41Ở

高橋幸資 .........................................23Ở

栗原宏征 ........................................ 26Ở

高橋Ở 守 .........................................37Ở

黒木Ở 豊 ........................................ 48Ở

高原浩之 .........................................38Ở

桑原正章 ................................... 10,Ở20Ở

高谷直樹 ..............................21,Ở22,Ở35Ở

幸田明生 ........................................ 41Ở

竹内道雄 ................................... 30,Ở51Ở

古賀晋治 ........................................ 37Ở

竹下典男 .........................................32Ở

小島美沙子 ..................................... 54Ở

多田羅洋太 ......................................23Ở

高妻卓司 ........................................ 37Ở

田中愛子 .........................................38Ở

小関卓也 ........................................ 44Ở

田中昭光 .........................................29Ở

小平律子 ........................................ 55Ở

田中孝欣 .........................................38Ở

児玉基一朗 ..................................... 38Ở

田中尚子 .........................................18Ở

後藤邦康 ........................................ 17Ở

田中浩雄 ................................... 20,Ở26Ở
58

田上新次郎 ..................................... 39Ở

平塚宣博 .........................................20Ở

張Ở 孝勇 ........................................ 55Ở

平野達也 ................................... 44,Ở45Ở

塚越規弘 ...............8,Ở24,Ở29,Ở39,Ở45,Ở54Ở

福田Ở 央 .........................................41Ở

柘植尚志 ........................................ 38Ở

藤田晃子 .........................................23Ở

土屋尊子 ........................................ 51Ở

藤田Ở 仁 .........................................41Ở

寺岡Ở 徹 ................................... 19,Ở42Ở

藤原真紀 .........................................37Ở

寺崎容子 ........................................ 35Ở

古川謙介 .........................................34Ở

手老省三 ........................................ 23Ở

古川健太郎 ......................................43Ở

土井ゆうこ ..................................... 23Ở

古川貴章 .........................................33Ở

時松敏明 ........................................ 26Ở

保崎佳嗣 .........................................38Ở

戸田智美 ........................................ 47Ở

堀内裕之 ................................... 18,Ở32Ở

殿塚隆史 ........................................ 33Ở

本田与一 ................................... 10,Ở20Ở

長澤寛道 ........................................ 53Ở

正井久美子 ......................................48Ở

中島Ở 佑 ............................. 34,Ở43,Ở52Ở

町田雅之 ................................... 36,Ở47Ở

長島Ở 直 ........................................ 35Ở

松井淳子 .........................................29Ở

中島春紫 ............. 24,Ở28,Ở46,Ở47,Ở48,Ở49Ở

松岡寿保 .........................................43Ở

中谷善博 ........................................ 33Ở

松澤Ở 洋 .........................................44Ở

長嶺一輝 ........................................ 50Ở

松田Ở 豊 .........................................49Ở

中村豊彦 ........................................ 55Ở

松村憲吾 .........................................21Ở

夏目豊彰 ................................... 25,Ở40Ở

丸井淳一朗 ......................................29Ở

西河Ở 淳 ........................................ 33Ở

丸山潤一 ........................ 28,Ở46,Ở48,Ở49Ở

西出辰徳 ........................................ 26Ở

水谷Ở 治 .........................................52Ở

西野武士 ........................................ 27Ở

水谷浩平 .........................................42Ở

西村Ở 顕 ........................................ 54Ở

水谷真也 .........................................40Ở

西村麻里江 ..................................... 27Ở

皆川Ở 一 .........................................28Ở

野川優洋 ................................... 39,Ở55Ở

峰時俊貴 .........................................41Ở

野島Ở 聡 ........................................ 52Ở

宮澤Ở 恭 .........................................55Ở

野中真由子 ..................................... 34Ở

村島健司 .........................................52Ở

秦Ở 洋二 ............................. 21,Ở36,Ở47Ở

森川Ở 康 .........................................39Ở

八田理恵子 ..................................... 38Ở

森谷敏康 .........................................21Ở

服部武文 ........................................ 26Ở

森山Ở 聡 .........................................55Ở

濱口Ở 哲 ........................................ 34Ở

八重樫香 .........................................45Ở

原Ở 彰 ........................................... 33Ở

安田庄子 .........................................29Ở

原田Ở 直 ........................................ 42Ở

矢原明典 .........................................17Ở

東田克也 ........................................ 21Ở

山内清語 .........................................23Ở

久田博元 ................................... 36,Ở47Ở

山形洋平 .........................................52Ở

日比忠明 ........................................ 12Ở

山岸賢治 .........................................37Ở
59

山口Ở 勇 ........................................ 19Ở

芳陵一生 .........................................37Ở

山崎晴丈 ........................................ 18Ở

吉田Ở 孝 ................................... 23,Ở34Ở

山下伸雄 ........................................ 54Ở

吉田隆延 ................................... 19,Ở36Ở

山田Ở 修 ........................................ 17Ở

吉田Ở 誠 .........................................53Ở

山根雄一 ........................................ 41Ở

李Ở 秉魯 .........................................23Ở

山本幹博 ........................................ 38Ở

若林三郎 .........................................41Ở

山本盛真 ........................................ 52Ở

和久Ở 豊 .........................................29Ở

横田正仁 ................................... 30,Ở51Ở

渡辺隆司 .........................................20Ở

横山英之 ........................................ 33Ở

渡辺久敬 ................................... 44,Ở50Ở

吉内くみ ........................................ 17Ở

割石博之 ................................... 20,Ở26Ở

60

糸状菌分子生物学研究会Ở 会則Ở
Ở
1.Ở

本会を糸状菌分子生物学研究会（FungalỞMolecularỞBiologyỞSocietyỞofỞJapan）と呼ぶ。また本会が開く研究会を糸状菌分子生物学コンファレンス（ConferenceỞ onỞ FungalỞ GeneticsỞ andỞMolecularỞBiology）と呼ぶ。Ở

2.

本会は糸状菌の分子生物学、細胞生物学、生化学、生理学、遺伝学などの普及発展を目的とする。Ở

3.

本会はその目的を達成するために次の事業を行う。Ở

4.

(1)

研究会及び総会の開催。Ở

(2)

会報の発行。Ở

(3)関連研究団体との協力事業。Ở

(4)

その他、必要と思われる事業。Ở

本会はその目的に賛同して入会した個人会員及び総会において承認された名誉会員を持って構成
する。Ở

5.

本会入会希望者は所定の入会申込書を提出し、別に定める入会金を納入するものとする。Ở

6.

本会はその運営のため、会長、運営委員若干名および会計監査 1~2 名をおく。任期は 2 年とし、改選は運営委員の推薦と総会の承認による。Ở
(1)

会長は本会を代表し、会務を統括する。Ở

(2)

運営委員は運営委員会を構成し会務を審議する。運営委員には庶務、会計、編集担当、広報担当をおく。Ở

(3)

会計監査は本会の会計を監査する。Ở

7.

本会は事業運営に必要な実費を年会費として個人会員から徴収する。Ở

8.

本会の事務年度は研究会の開催準備開始から「次期」研究会の開催準備開始直前までとする。Ở

9.

前事務年度の庶務、会計については、これを総会において報告し、承認を得るものとする。Ở

10. 本会則の改定には総会出席者過半数の賛成を必要とする。Ở
Ở Ở Ở Ở Ở Ở Ở Ở Ở Ở Ở Ở Ở Ở Ở Ở Ở Ở Ở Ở Ở Ở Ở Ở Ở Ở Ở Ở Ở Ở 以上Ở
Ở
補則Ở
(1)

本会則は 2001 ᖳ 7 ᭮ 1 日より発効する。Ở

(2)

本会入会金は 1,000 円とする。Ở

(3)

年会費は一般会員 2,000 円、学生会員 1,000 円とする。Ở

(4)

研究会の通知及び会報は、当該年度までの会費を納入した会員に送付する。Ở

(5)

2 年度にわたって会費納入のない会員は、その資格を失うものとする。Ở

(6)

研究会の発表者は、会員に限るものとする。新入会員の演題申し込みは会費納入の確認を持って受理する。Ở

61

糸状菌分子生物 学研究会運 営委員会 名簿ỞỞ会Ở Ở 長ỞỞ

北本Ở 勝ひこỞỞ 東京大学大学院農学生命科学研究科（〒113-8657Ở 東京都文京区弥生 1-1-1）Ở

Ở Ở Ở
運営委員Ở
Ở
秋田Ở 修Ở
Ở 独立行政法人酒類総合研究所（〒739-0046Ở 広島県東広島市鏡山 3-7-1）Ở

五味Ở 勝也ỞỞ 東北大学大学院農学研究科（〒981-8555Ở 仙台市青葉区堤通雨宮町 1-1）Ở

鮫島Ở 正浩ỞỞ 東京大学大学院農学生命科学研究科（〒113-8657Ở 東京都文京区弥生 1-1-1）Ở

Ở Ở Ở
会計担当Ở
Ở
有江Ở 力Ở
Ở 東京農工大学農学部（〒183-8509Ở 東京都府中市幸町 3-5-8）Ở

竹内Ở 道雄ỞỞ 東京農工大学農学部（〒183-8509Ở 東京都府中市幸町 3-5-8）Ở

Ở Ở Ở
編集担当Ở
Ở
小林Ở 哲夫ỞỞ 名古屋大学大学院生命農学研究科（〒464-8601Ở 名古屋市千種区不老町）Ở

Ở Ở Ở
広報担当Ở
Ở
川口Ở 剛司ỞỞ 大阪府立大学大学院農学生命科学研究科（〒599-8531Ở 大阪府堺市学園町 1-1）Ở

Ở Ở Ở
庶務担当Ở
Ở
堀内Ở 裕之ỞỞ 東京大学大学院農学生命科学研究科（〒113-8657Ở 東京都文京区弥生 1-1-1）Ở

62

第１回糸状菌分子生物学コンファレンス要旨集
平成 13 年 11 月 7 日印刷
平成 13 年 11 月 7 日発行
発行者

糸状菌分子生物学研究会
編集者〒464-8601

小林哲夫

名古屋市千種区不老町

名古屋大学大学院生命農学研究科
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