第２３回

動物生殖工学研究会

プログラム・抄録集

平成２１年１２月５日（土）
北里本館

大会議室

プログラム
総会
開会挨拶

会長

１．特別講演横山峯介

座長 福井えみ子

牛精子のＸＹ分離について
浜野晴三（（社）家畜改良事業団）

２．一般講演座長 後藤元人
１）実験動物技術者と生殖工学技術－ 日本実験動物技術者協会の紹介を兼ねて －○井上 吉浩（東北大学加齢医学研究所実験動物管理室）
２）熊本大学 CARD における生殖工学技術研修について○土山修治（熊本大学生命資源研究・支援センター動物資源開発研究部門資源開発分野）

３）NSET を使用した受精卵子の子宮移植法の検討○井上健一 1, 白石亜紀 1,2, 金子友紀 1,2, 矢川沙知 1,2,香川貴之 1,2 ,徳永友子 1,2,
中尾和貴 1（1 神戸理研

動物実験支援ユニット、2（株）JAC）
座長 鈴木宏志

４）マウス卵を用いた新鮮，凍結融解および凍結乾燥イヌ精子の受精能力の判定○渡部浩之，浅野智由，阿部靖之，福井豊，鈴木宏志（帯広畜産大学）
５）受精における ACE2 の機能解析○後藤元人（国立国際医療センター研究所 感染症制御研究部 ヒト型動物開発研究室）
６）マウス精子のプロテオミクス○竹尾 透（ＣＡＲＤ）

３．技術領域指定演題～マウス胚の凍結保存～（１）緩慢凍結法について
長谷川孝徳（理研免疫センター

免疫器官形成Ｇ/動物管理Ｇ）（２）EFS を用いた簡易ガラス化法
枝重圭祐（高知大学農学部）（３）DAP213 を用いた凍結保存
宮地均（京都大学ウイルス研究所）

４．懇親会（北里本館１階職員食堂）

座長 中潟直己

１．特別講演
牛精子のＸＹ分離について
浜野晴三（（社）家畜改良事業団）
家畜生産の場において、性をコントロールする技術の確立は、畜産経営に多大な貢献をもたらす。
性を判別する技術は、すでに受精卵の細胞の一部からＤＮＡを抽出・増幅して雌雄を判断する技術が実用化のレベルに達しており、当団でもこの技術を利用し、生産者に求められる性の体外受精卵の供給を行った時期がある。
その背景には、同じ経費をかけて生産した子牛が家畜市場で販売される際、雌子牛は雄子牛に比べて安価に取引され、価格差が生じる現実があることに起因する。
しかし、受精卵の性判別は経費以上に不要な性の受精卵を廃棄するという現実が生産コス
トを引き上げる。さらに、繁殖方法の普及率から、性判別した受精卵の移植よりも、選別精子の人工授精が可能になることが強く望まれた。
当団では、体外受精技術の開発と実用化への動きと併走するように、1988 年から精子の選別に関する研究開発に着手してきた。
哺乳動物の性染色体はＹ染色体よりＸ染色体が大きいことから、Ｘ精子に含まれるＤＮＡ
量はＹ精子より多く、牛ではその差が３.８％である。さらに、蛍光物質（Hoechst33342）が精子の生存性を失うことなく細胞膜を通過してＤＮＡに結合することに着目した Johnson らは、精子を染色後、フローサイトメーターで蛍光強度を測定することによりＸＹ精子を判別して分離することを考案し、1989 年に特許を出願している。
1988 年に Johnson の指導の基にフローサイトメーター（EPICS-753）を導入し、技術の有効性に関する基礎的試験に着手した。しかし、当時の技術は精子尾部を切断し、頭部のみを選別するに留まっており、選別速度も１時間に５～１０万個であった。
1997 年に EPICS-753 に比べて解析速度と分取速度が改善され、効率よく精子を選別できる機能を備えた２世代目の FACS Vantage を導入した。この機種での選別速度は 30～40 万個／時間に向上したのみならず、尾部の付いた精子の選別が可能となり、人工授精に利用可能な運動性も有していたが、凍結精液を量産するにはまだ選別速度が遅く、実用化には至らなかった。
一方、1996 年に本技術に係る特許の独占実施権を取得したＸＹ社が設立され、この方法でヒト以外の哺乳動物の選別精液を生産する場合は、例外なく同社から研究あるいは商業ライセンスを得ることが必要となった。
2000 年に研究ライセンスを取得し、３世代目となる MoFlo-SＸを導入して生産試験に着手

した。この機種はさらに選別速度が上がり、1,500 万個／時間を回収する水準が維持でき、90％の正確度でＸあるいはＹ染色体を有する精子を人工授精にも体外受精にも利用することが可能な状態で選別できるまでに発展した。この数年間の技術革新は、めざましいものがあった。
2001 年から５年間、選別精液の生産と人工授精の野外試験に取り組んだ。人工授精には、
選別精液、非選別精液共に１ストローあたり 300 万個の精子を封入して用いた。未経産牛
2,124 頭に授精した結果、47.9％にあたる 1,018 頭に受胎が確認された。一方、非選別精液での受胎率は 58.7％であった。この試験を通して、選別Ｘ精子の授精で産まれた雌子牛の割合は 93.8％、選別Ｙ精子での雄子牛は 92.5％であった。
この成績から、2006 年にＸＹ社と商業ライセンス契約を締結し、選別精液を用いて生産した体外受精卵の供給を同年１０月から、「Sort９０（ソート９０）」と銘じた人工授精用選別精液（主にホルスタイン種Ｘ精子）の一般供給を 2007 年２月から開始した。
その後、機器の台数を増やし、2009 年には４世代目として MoFlo－XDP-SX を導入して生産体制の増強を図っている。
本講演では、性選別精液生産の実際と利用の現状を紹介すると共に、そこから得られてきた知見を紹介したい。

２

一般講演

１）実験動物技術者と生殖工学技術－日本実験動物技術者協会の紹介を兼ねて－

井上 吉浩（東北大学加齢医学研究所実験動物管理室）【当施設の概要】当施設は、従来より主に腹水肝癌の継代移植、化学発癌動物の作製、肺の移植実験および腫瘍免疫実験などに利用され、当研究所の癌研究の発展に大きく貢献してきた｡近年は、癌研究に加えて、脳・神経疾患、老化の研究も盛んになり、遺伝子組換えマウスを用いた実験が爆発的に増加し、これらのマウスが飼育動物（マウス；8,200 匹、ラット 50匹）の圧倒的多数を占めている。また、飼育動物がマウスとラットの 2 種類のみというユニークな施設でもある。
施設の職員構成は、研究分野教授との併任での施設長をはじめ、施設現場のスタッフは、技術職員が 4 名、再雇用職員が 1 名、技術補佐員が 2 名、外注職員（清掃業務）が 1 名の計8 名である。その内、標準的な生殖工学技術を有するスタッフが 3 名、現在、同技術を習得
中のスタッフが 1 名である。
施設の業務は、1) マウス・ラットの飼育管理・衛生管理（健康状態の観察、ケージ交換・給餌・給水・清掃、飼育器材等の洗浄・滅菌等）、2) 実験動物の品質管理（感染症予防策、検疫･検査、微生物モニタリング）、3) 実験動物技術の研究支援、教育・指導（動物実験に関する助言・技術指導、生殖工学技術による研究支援 【Tg/KO マウスの作成（現在は行っていない）、受精卵からの生体復元、体外受精による系統維持、胚の凍結保存業務（立上げ検討中）】、および 4) 施設管理運営（予算運営、決算事務等、飼育管理計画立案調整、空調等設
備の管理等）である。
【譲渡マウスの受入れは、未だに生体での導入である】研究者間（機関間）の共同研究のために遺伝子組換えマウスの生体での授受（譲渡）が盛んに行われるようになり、国内の動物施設では譲渡マウスが原因による感染事故の事例も散見される。ひとたび感染事故が起きた
場合、尊い生命の損失、多大な経費が掛かるばかりでなく、動物実験における研究がストッ
プしてしまうという最悪の事態となる。生体での導入は、輸送時の逃亡や前述の感染事故の危険性があるが、実験に着手できる期間が短くて済むこと、一方、凍結胚での導入の場合は、無論輸送時の逃亡は無く、感染事故の危険性もないが、凍結胚の融解、仮親マウスの準備、胚の移植といった生殖工学技術が必要であり、生体への復元に時間がかかることなど、それぞれに長短がある。当施設においても生体での導入が殆どであり、凍結胚や凍結精子での導入は稀である。以上のことから、当施設では、平成 14 年から検疫・検査システムを立上げ、譲渡マウスの病原微生物のチェックを強化している。
【研究支援業務としての Tg/KO マウス作製業務】演者は、所内ラボにおいて KO マウスの作製に参画してきたことを背景に、所内ユーザーからの要望を受け、遺伝子組換えマウス作
製を動物施設の研究支援サービス業務として立ち上げた。要望の理由として、遺伝子組換え

マウス作製までのプロセスは非常に長く、技術的にも極めて大変な作業であること、作製に要する機器、費用や人手、飼育スペースは膨大なものになること、他機関からのマウス生体での導入では検疫・検査が必要になること、さらに、1 研究者が KO マウスを作製して研究まで行うことは相当に困難であることからである｡本業務の立上げにあたっては、インジェク
ションマシーンなどを所内で保有する既存のものを使用し、不備の関連機器を予算化し整備した｡支援業務の内容は、依頼者側で注入用 DNA 液、Recombinant ES 細胞の準備、出産マ
ウスのスクリーニングを行うこととし、演者らは生殖工学技術のパート、すなわち、マウス
および胚の準備から、細胞の培養、マイクロインジェクション、胚移植、離乳後の供給までとした。マウス作製経費は受益者負担とし、実費程度の比較的安価な料金設定をし、成功報酬とした。これまで、Tg マウス 2 プロジェクト、KO マウス 2 プロジェクトの成果を挙げているが、外部の受託作製機関に比べて作製スピードが劣ること、多数の作製プロジェクトを同時に受け入れられないこと、執務時間外いわゆるエキストラでの作業になることが多いこと、さらに大学法人化に伴い、予算配分の増加に反映されなくなったことから、現在、本業務は行っていない。
【現在の生殖工学技術との関わり】生殖工学技術を応用した研究支援業務をルーチン化する
ため、新人技術職員を中心に精管結紮術、過排卵誘起、採卵、胚の操作、体外受精、胚の移植などの技術トレーニングを年 2 回程度行っている。胚の移植により産仔が得られるような技術レベルに達した時点で、熊本大学 CARD における高度技術研修会（生殖工学技術）を受講し、最終的な技術の習得を目指している。一方で、稀に依頼のある凍結胚からの生体への復元や、系統断絶の危機に瀕したマウス系統の体外受精による系統維持を行っている。本来のルーチン業務との兼合いもあるが、生殖工学技術を有する施設スタッフが充実した際には、胚の凍結保存業務（プライベートバンク）の立上げを検討している。また、偽妊娠マウス作
製時において発情期のマウスを選抜して交配を行うほうがランダム交配よりも効率が良いこと、技術スタッフが胚移植技術までを習得するまでのトレーニングやその成果についても併せて紹介する。
【日本実験動物技術者協会（実技協）；Japanese Association for Experimental Animal
Technologists（JAEAT）について】実技協（会員約 1,300 名）は、実験動物技術者における 1) 知識と技術の研修、2) 資質と地位の向上、3) 学術的発展への寄与を目的として発足した。会員構成は、大学や研究所（35%）、製薬企業（31%）、受託研究機関（10%）、動物生産
企業（10%）、人材派遣企業（10%）、その他（4%）と、実験動物に関連するあらゆる業種、職域からなる極めてユニークな学術的職能団体である。年次総会（全国大会）において、過去 10 年間における生殖工学技術関連の発表数は、一般演題でトータル 100 題 / 667 題 (15 %)、最近 4 年間では 20%（発表数全体の 1/5）と増加傾向にある。
【実験動物技術者】実験動物技術者は、医学、薬学、農学、獣医学、生物学等を土台とする総合科学である実験動物科学の推進役を担い、バイオメディカル研究の支援者として欠かせない存在になっている。近年の実験動物の福祉や動物実験倫理に関する新たな展開の中、今後益々、実験動物技術者としての専門性が問われ、その役割も大きくなってくるものと予想される。また、実験動物福祉の充実のためには実験動物技術者の力が不可欠であり、人道的な動物実験を推進していく力になって行かなければならないと考える。
【終わりに】近年、体外受精や胚・精子の凍結保存を含む胚操作技術を応用したレベルの高い飼育管理が求められるようになってきており、生殖工学技術は実験動物技術者として必須の技術になりつつある。医学生命科学研究の発展には、今後益々、研究者と技術者のタイアップが重要なキーポイントになってくるものと思われる。

２）熊本大学ＣＡＲＤにおける生殖工学技術研修会について○土山 修治、福本 紀代子、近藤 朋子、春口 幸恵、中川 佳子、竹下 由美、
中牟田 裕子、寺崎 喜美、金子 武人、中潟 直己（熊本大学 生命資源研究・支援センター、動物資源開発研究部門（CARD）資源開発分野）
内容： 熊本大学生命資源研究・支援センター 動物資源開発研究部門(CARD)では、2000 年より当施設において生殖工学技術研修を 17 回開催し、100 名以上の受講生に遺伝子の解析や体外受精、胚・精子の凍結保存などの基本的な生殖工学技術の指導を行ってきた。
研修ではわかりやすい手技の説明のために、パソコン、DVD などを用いた講義や倒立顕微鏡、実体顕微鏡、微細な術式の画面を逐次スクリーンに映し出す画像変換マルチプルスクリーン方式を採用している。
さらに、研修の終わった受講生には、１年後に凍結胚を送り、受講生に“融解— 移植— 産子を作出するという宿題”を課し、確実な生殖工学技術の普及を実践している。
また、最近開発された胚の冷蔵保存・輸送などの方法や、安定した B6 マウス精子の凍結保存法なども研修に盛り込まれており、常に新しい技術を普及させるための研修会を目指している。
現在の主な研修スケジュールは、以下の通りである。
第１日目
・FERTIUP を用いた体外受精
・マウスピース・キャピアリー作製 胚操作の練習
・受精卵の洗浄・観察
第２日目
・胚の凍結・融解
・凍結融解胚の冷蔵保存
・精子の凍結・融解
・ＥＳ細胞と８細胞期胚との共培養
第３日目
・精管結紮雄の作製
・子宮内胚移植（キメラ胚）・卵管内胚移植（冷蔵胚）
第４日目
・卵管灌流
・ 帝王切開今後は、研修会で行われるデモンストレーションの映像や、それを解説する音声をネット上でリアルタイムで公開し、多くの人々に生殖工学技術について学んでもらう機会を広げる
取り組みも行っていく予定である。

３）NSET を使用した受精卵子の子宮移植法の検討○井上健一 1, 白石亜紀 1,2, 金子友紀 1,2, 矢川沙知 1,2,香川貴之 1,2 ,徳永友子 1,2,
中尾和貴 1（1 神戸理研

動物実験支援ユニット、2（株）JAC）

ParaTechs 社の NSET (Non-Surgical Embryo Transfer) device を用いた子宮移植法を検討した。この方法は、専用のピペットマンのチップを用いて膣を経由し、マウス胚盤胞期胚を非外科的に子宮内への移植を可能にする方法である。それ故、通常の子宮移植に必須な操作である麻酔等を必要とせず、さらに、ハサミ等の手術器具も必要としないため、大幅な処理時間の短縮並びに、レシピエントマウス個体への影響の低下が期待できる。そこで、我々は従来の子宮移植法と本法を比較したので報告する。また、変異マウスの作製においては、受精卵子に DNA および ES 細胞などを注入する。これらの操作された胚の個体への発生能は、その注入された DNA や ES 細胞の影響ならびに、作業者の技術の習熟度に左右されるため一概には言えないが、一般的にはその発生能力が低下する傾向がある。そのため処理胚を移植した
レシピエントマウスは、自然分娩する事なく分娩予定日に帝王切開法により、目的の産仔を得る場合が多々ある。そこで、我々は、分娩誘導剤として、PGE(ジノプロストン)を飼料に添加することで、自然分娩が誘導できるかを検討したのでこの結果も併せて報告する。
また、今回の報告にあたり、実験方法として、子宮の片側に受精卵子を移植することで検討している。そのため、前回の本会においてマウスの双角子宮の片側に移植された胚がその発生過程すなわち着床までの間に、別の一方へ移動が可能かも併せて報告する。

４）マウス卵を用いた新鮮，凍結融解および凍結乾燥イヌ精子の受精能力の判定○渡部浩之，浅野智由，阿部靖之，福井豊，鈴木宏志（帯広畜産大学）【目的】精子の凍結保存は長距離輸送を可能にし，優良遺伝子の伝播を容易にする。精子の凍結保存の一種である凍結乾燥保存は，液体窒素を使用せずに精子の遺伝情報を長期間保存でき，精子の保存管理を大幅に簡素化できるという点で非常に優れている。よって，イヌ精
子の凍結乾燥保存法の確立は，イヌの人工繁殖に大いに貢献すると考えられる。しかし，マウス等では凍結乾燥後の精子に染色体異常が頻発することが報告されており，凍結乾燥精子の受精能および染色体正常性をモニタリングすることが必要とされる。そこで本研究では，
マウス卵子を用いて凍結乾燥したイヌ精子の受精能力および染色体正常性を評価した。また
染色体検出の効率化のために人為的に融合させたマウス卵子を用い、卵子の体積がイヌ精子の染色体分析に及ぼす影響を検討した。
【方法】過排卵誘起を施した B6D2F1 マウス卵管内から採取された体内成熟卵子に新鮮射出，
凍結融解および凍結乾燥イヌ精子を常法に従いピエゾマイクロマニピュレーターを用いて顕微授精（ICSI）した。ICSI から 19− 21 時間目に卵子を漸進固定空気乾燥法で固定後，2%ギムザ染色液で 10 分間染色して第一有糸分裂中期の精子染色体を分析した。
【結果】ICSI 後 6 時間において，射出新鮮および凍結融解精子で各々70%および 41%の卵子が変形したために実験から除外した。この卵子の変形は精子が持つ先体酵素により引き起こされたと考えられた。残りの正常形態卵において雄性前核率は，凍結乾燥精子（92%）が新鮮射出（62%）および凍結融解精子（69%）より有意に（P<0.05）高くなった。また染色体正常性では，射出新鮮（73%）および凍結融解（79%）精子が凍結乾燥精子（25%）よりも有意に（P<0.05）
高くなった。一方、マウス融合卵子へ凍結融解精子を注入したところ、ICSI 後 6 時間目における卵子の変形が抑えられ（2-10%）、雄性前核形成率も大幅に改善した（88-89%）。また、融合卵子の使用による染色体正常性への影響はなかった（73-77%）。以上の結果から，凍結乾燥後のイヌ精子は受精能力を維持しているものの，凍結乾燥マウス精子と同様にその多くは染色体異常を有していることが明らかとなった。また、マウス融合卵子を用いることで凍結融
解イヌ精子の染色体検出率が大幅に改善され、染色体分析に有効であることが示された。

５）受精における ACE2 の機能解析
後藤 元人（国立国際医療センター研究所 感染症制御研究部 ヒト型動物開発研究室）
SARS ウイルスの受容体であるヒト アンギオテンシン変換酵素 2（以下 ACE2）を過剰発現させた rCC10-hACE2 トランスジェニックマウス（以下 ACE2 TG マウス）を作製したところ、
この ACE2 TG マウスは著しく産仔数が低下していることがわかった。
ACE2 は、アンギオテンシン変換酵素（以下 ACE）とホモログとして同定され、血圧調節においては ACE とバランスをとりながら重要な役割を担っている。ACE2 とホモログの ACE KO
マウスは不妊を示し、精子-卵透明帯結合能が低下していることが知られている。これより我々は ACE2 が ACE 同様に受精過程に重要な働きがあるのではないかと考え解析をおこなった。
ACE2 TG マウスでは、体外受精率、精子-卵透明帯結合能も有意に低値を示した。さらに
DX600(以下 ACE2 阻害剤)処理する事で ACE2 TG マウスと C57BL/6 マウスの精子-卵透明帯結合能は、２倍以上有意に改善し、ACE2 TG マウスでは体外受精率も有意に改善する事がわかった。さらに ACE2 KO マウスでは、ACE2 阻害剤処理と同様な傾向を示した。これにより ACE2は、特異的に精子-卵透明帯結合能への関与が示唆された。
次にリコンビナントマウス ACE2 を精子前培養処理培地へ加え精子－卵透明帯結合能を解析したところ、精子− 卵透明帯結合能は低値を示した。さらに ACE2 の発現部位を確認したところ精巣上体ならびに精子先体膜に強く発現している事が新に確認された。これより ACE2の受精におけるターゲット分子は精子先体膜にある可能性が高く、今後は精子先体膜を中心に ACE2 ターゲットの分子を同定したいと考えている。

６）マウス精子のプロテオミクス○竹尾 透 1)

三池浩一郎 2)

今中応亘 2)

三池輝久 3)

山村研一 2)

中潟直己 1)（1) 熊本大学 生命資源研究・支援センター 動物資源開発研究部門(CARD) 資源開発分野、
2) 熊本大学 生命資源研究・支援センター 表現型クリニック分野、3) 兵庫県立総合リハビ
リテーションセンター リハビリテーション中央病院子供の睡眠と発達医療センター）
プロテオミクスとは、細胞や組織あるいは個体に存在するタンパク質の構成を網羅的に把握し、これらタンパク質の相互作用を大規模に解析する研究手法である。近年、生物学ある
いは医学研究において、生命現象の全体像を迅速に解明する手段として、プロテオミクス技術が汎用されている。
精子は、雄性生殖細胞として受精に特化した機能を持つ極めてユニークな細胞である。現在までに、生化学的手法や遺伝子改変動物を用いた手法により、精子の受精能に関与する重要な分子機構が解明されつつある。しかしながら、精子が受精能を獲得するまでに、精子生体膜成分の変化や種々の生化学的変化を生じることが知られているが、その詳細な機序は明らかではない。
精子のプロテオミクスは、新たな視点から受精現象の理解を深める可能性があり、精子の機能に関与する因子の解明に寄与することが期待できる。そこで我々は、マウス精子におけるプロテオミクス技術の構築を目的として、マウス精子に適したプロテオミクスシステムの開発を試みた。また本検討では、精子のタンパク質の発現解析に iTRAQ 法を用いて、マウス
系統間の精子構成タンパク質の比較を行った。今回は、本検討により得られた知見について
紹介する。

３

技術領域指定演題～マウス胚の凍結保存～技術領域指定演題へのアンケート集計結果
昨年度の第２２回研究会（平成２０年１２月６日）終了時に回収したアンケート結果は、以下の通りでした。
回 答 数

１６（複数回答）

凍結保存・融解

５

ＥＳ（株樹立）３

ＤＮＡインジェクション
顕微授精

２

２

以下、各１
体外受精（系統による影響（１２９系、ＢＡＬＢ系））、ＩＶＭ
ラットＩＶＦ（精子凍結、ＡＩ）、キメラ作製、冷蔵胚と凍結胚の移植
麻酔方法、
新人教育（技術の継承をどのようにして客観的に評価するか）
生殖工学の将来、応用、可能性ー他分野とのコラボレーションー

（１）緩慢凍結法について
長谷川孝徳（理研免疫センター

免疫器官形成Ｇ/動物管理Ｇ）

近年、遺伝子機能解析やそれらに関連した研究が急速に進歩してきている。おもな材料として用いられているのが遺伝子改変マウスであり、それらは加速度的に系統数が増加している。それに伴い、各飼育施設ではそれら飼育スペース不足が恒常的となり、飼育スペースの確保に翻弄されているのが現状であると考えられる。限られた飼育スペースで、効率よく目的を達成するためには「マウス」から「研究者」へと主導権を移し、計画的にマウスを維持繁殖できるようにすることが重要である。すぐには利用しない系統などは凍結保存して、必要な時に、必要な数だけ生産することが望ましい。現在用いられているマウス受精卵の凍結保存法は、緩慢凍結法、修正緩慢凍結法、超急速ガラス化法に大別することが出来る。マウス胚の凍結保存方法として簡易ガラス化凍結法が確立され，その普及は従来の緩慢凍結法から移行しつつあるのが現状である。
緩慢方法は特別な技術を要することなく数回の練習で安定した成績が得られ、われわれは以来この方法で、センターの支援業務を行っている。
1977 年より実験動物中央研究所で横山先生（現新潟大学脳研究所教授）が凍結・融解操作の過程における条件の検討（保存液の量・DMSO 濃度・凍結速度・植氷温度・融解速度）をはじめられ、そのデータを一部紹介する。
当時は簡易型の凍結容器を用いて手作業での操作であったが、きわめて安定した融解成績が得られていた。1992 年（実中研を退職）以降は米国 FTS System 社のプログラムフリーザー(BIO-COOL)にて同一条件で凍結を行っている。
具体的には、１．過剰排卵処理方法、体外受精方法あるいは胚の回収方法、２．体外受精、胚の回収・凍結に用いる機材、器具、道具、実験環境、道具の滅菌法等、３．BSA、血清ある
いはパラフィンオイル等の選択、４．シャーレ、その他の器具の選択、５．培養液、保存液の作成、保存方法、使用期限等。培養条件（温度、気相等）、６．凍結・融解方法、７．生存性の判定方法（移植前）、８．その他留意すべきこと、コツ等のついても簡単に説明する。

簡易型凍結容器（実験動物中央研究所より借用）

FTS 社製プログラムフリーザー
BIO-COOL

凍 結 操 作
１．胚を新鮮 PBI メディウムで３回洗浄する。
２．クライオチューブに PBI メディウム 100μl と２M

DMSO 50μl を入れ

20-40 個の胚を移す。
更に２M

DMSO 50μl を加え室温で 10 分間静置する。

３．次いで 10 分間冷蔵庫（4℃）内に静置する。
４．クライオチューブを 0℃で安定したプログラムフリーザーに入れ、凍結を開始する。
５．-7℃に達したところで液体窒素（LN2）ガス内で冷却した有柄針（約 10cm）を保存液の液面に近付け植氷（seedinig）する。
６．-50℃まで 0.5℃／min の速度で冷却する。
７．-50～-70℃までは、1℃／min の速度で冷却する。
８．-70℃まで冷却したクライオチューブはケーンにセットし液体窒素（LN2）内に浸漬し保存する。
融 解 操 作
１．クライオチューブを液体窒素（LN2）中から取り出し、室温（20℃）で静置する。
おおよそ 10～15℃／min で温度上昇する。
２．完全に融解したら、クライオチューブに室温の PBI メディウム(100,100,200μl) を
2 分間隔で添加する。
３．クライオチューブより胚を回収し、新鮮 PBI メディウムで 3 回洗浄する。
更に、Whitten’s メディウムで 3 回洗浄して CO2-インキュベーター（37.0℃)に
30 分間保持する。
４．形態的な観察を行ない、生存率を調べる。
マ ウ ス 胚 の 冷 却 速 度 と そ の 所 要 時 間
0 ~・・・・・・・・

0.5℃／min ( 14ｍin)-7 ℃（seeding）・・・・・・・・

5 分間平衡 ( 5min)

-7

-7 ℃

~

-50 ℃

・・・・・・・・

0.5℃／min ( 86min)

-50 ~

-70 ℃

・・・・・・・・

1.0℃／min ( 20min)
125min（２）EFS を用いたガラス化凍結保存
枝重圭祐（高知大学農学部）
1985 年に Rall & Fahy によって開発されたガラス化凍結法（Nature, 313, 573-575, 1985）
は、冷却過程に時間がかからず、条件によっては従来の凍結保存法より高い生存率が期待できたために、胚や卵子の凍結保存法として普及してきた。最初に用いられたガラス化保存液
VS1 は毒性が極めて高かったことから、我々は、毒性が低いエチレングリコールをベースにした EFS を開発した（J. Reprod. Fertil., 89, 91-97, 1990）。EFS では胚を室温で操作することができ、胚のステージによって１段階法と２段階法を使い分けることによって、様々な発育ステージのマウス胚に適用することができる（Mol. Biotech., 7, 173-179, 1997）。
また、ヒトを含む多くの哺乳動物種の胚に使用することができる。一般に、ガラス化凍結した胚は、凍結時の過冷却度が大きく、ガラス転移温度（-130℃付近）より高い温度で保存すると容易に脱ガラス化するため、輸送には液体窒素ガスで冷却する高価な輸送容器が必要である。最近、我々は、EFS 液のスクロース濃度を高めた、液体窒素中での過冷却度の小さい
ガラス化溶液を開発し、マウス２細胞期胚をドライアイス温度（-80℃）で一週間以上保持することに成功した（Biol. Reprod., DOI:10.1095/ biolreprod.109.077685）。この方法でガラス化凍結した胚は、ドライアイス温度で保持した後に液体窒素で再冷却しても生存率がほとんど低下しなかった。したがって、凍結胚をドライアイス入りの簡易容器で輸送が可能である。この方法は、従来のガラス化凍結の簡便さと輸送の簡便さを併せ持つことから、新たなマウス胚の凍結保存法として期待できる。

（３）DAP213 を用いた凍結保存
宮地均（京都大学ウイルス研究所）

マウス初期胚のガラス化保存は 1985 年に発表された Rall & Fahy の報告が始まりである。
1989 年には中潟が DAP213 を用いたガラス化保存を報告した。DAP213 は耐凍保護剤に DMSO 2M,
Acetamide 1M, Propylene glycol 3M を使用している。中潟の凍結方法は室温で 20-30μℓのDAP 溶液を凍結チューブに入れその中に胚を移し『10 秒以内』に液体窒素へ投入するという方法であった。この『10 秒以内』が非常に難しく、安定した凍結・融解のためにはかなりのテクニックが要求され、その為に残念ながら普及したとは言いがたい状況であった。
その後、1997 年に中尾らが DAP213 を用いてより簡単に凍結・融解を行う簡易ガラス化法を報告した。改良したポイントは緩慢凍結法で使う 1M の DMSO で前処理を行った事と、DAP213
を 0℃に冷やした点である。DAP213 を冷やす事で細胞毒性を下げ、安定した凍結保存が可能となった。この簡単で安定したガラス化保存法は、ご承知のように embryo bank を始め多くの機関で採用されて現在に至っている。
DAP213 を用いた簡易ガラス化法の具体的な方法は以下の通りである。
１、室温で 1M DMSO のドロップをシャーレのフタ等に用意する。
２、1M DMSO のドロップに凍結する胚を入れる。
３、ピペットマンを 5μℓ にセットし 1M DMSO と共に胚を吸い上げる。
４、5μℓ の 1M DMSO と胚を凍結チューブに入れる。
５、0℃でチューブを５分間保持後、0℃の DAP213 を 45 または 95μℓ 添加する。
６、更に５分間 0℃で保持した後、液体窒素に入れ凍結させる。
７、融解は、先ずチューブのフタを開けて中に入った液体窒素を捨てる。
８、30 秒～１分 30 秒後に 37℃に温めた 0.25M Sucrose を 900μℓ 添加する。
９、シャーレのフタ等に融解した溶液を移して胚を回収し、mWM 等で洗浄する。
方法で示したように、DAP213 の量は 45μℓ や 95μℓ などのバリエーションがある。その他にも 1M DMSO は 5μℓ ではなく、20μℓ 程度入れても凍結保存が可能である。さらに 0℃で保持する時間も５分間ぴったりでなく、多少長くても短くても問題はない。通常、ガラス化
保存は、『実施方法の小さな変動に対して感受性が高く、大変な熟練を要し、そして間違いの許容範囲は狭い。』（マウス胚の操作マニュアル＜第三版＞日本語訳版第 15 章から引用）とされるが、DAP213 を用いた凍結保存は上述したように『遊び』、つまり許容範囲が非常に大きく、その点が普及した大きなポイントではないかと考えられる。
今回、中潟、中尾を差し置いて私が話をすることになり「本当にいいんですか？」という気持ちが非常に強い。私が選ばれたのは主に理研、発生・再生研において中尾の下で多量の凍結保存を行って来たからだと思われる。今回は理研時代の話だけではなく、チャールス・
リバーの頃やウイルス研での凍結保存も含め、現場でどんな事を行っているのか、泥臭い話を多くしたいと思う。たくさん凍結保存を行う中で実はたくさんの失敗をしている。出来るだけ多くの失敗例を紹介し、反面教師として皆様の参考にしていただければ幸いである。

《資料編》DAP213 を用いた凍結保存

京都大学ウイルス研究所

宮地 均A) 動物：B6 メス 10 週齢、ICR メス 8 週齢で購入し、翌週に体外受精または自然交配させて使用。体外受精に使うオスは 12 週齢以上、52 週齢以下で交配に使用している場合は単飼育
して 2 週間以上経過してから使用。
B) ホルモン処置：PMSG はアスカ製薬動物用セロトロピン 1000 単位。hCG はアスカ製薬ゴナト
ロピン 1000 単位。50ml の注射筒に 18G の針をつけて 20ml の大塚製薬生理食塩水 3 本、計 60ml で 1000 単位のアンプル 2 本を融解。ガラスのディスポ試験管に 5ｍｌ＝20 匹分(正確には 25 匹分）または 2.5ｍｌ＝10 分匹（正確には 12.5 匹分）で分注しパラフィルムをまいて使用時まで凍結保存。凍結しているホルモンを試験管ごと水につけて溶かし 26G 針付 1ml ツベ
ルクリン用注射筒を使って１匹あたり 0.2ml（6.6IU）を腹腔内投与。PMSG は土曜日または月
曜日の 14 時から 20 時の間に投与。hCG は PMSG 投与 2 日後の月曜日か水曜日に投与。
hCG の投与時間は体外授精の場合は 16 時 30 分から 17 時 30 分の間、自然交配の場合は15 時から 17 時の間。理研の頃は 1000 単位のホルモンを 20ml の生食に融解し 1 匹に 0.1ml（5IU）投与、融解して１週間以内に使いきるのでホルモンの凍結はしていなかった。
C) 体外受精：hCG を投与した翌日、火曜日か木曜日の 8 時 30 分から 10 時までに精子を採取
後引き続き採卵。11 時頃までに精子を添加。使用培地は HTF。
D) 前核：DNA インジェクション用の前核は体外受精の場合、精子添加後 5～6 時間にヒアルロニダーゼを 1mg/ml（目分量）添加した HTF か mWM で洗ってから前核を選別し凍結。自然交
配はプラグが確認されたメスの卵管を午前 10 時くらいから採取し体外受精と同様にミネラルオイル中で卵管を裂いてヒアルロニダーゼを添加した培地に採卵し裸化。15～16 時に凍結。
B6 は体外受精、ICR は自然交配で用意する事が多い。
E)2 細胞：系統保存の場合は、体外受精後、16 時から 17 時頃に mWM へ培地交換。翌日 2 細胞へ発生した胚を凍結。

F)

8 細胞：ES インジェクション用の 8 細胞または胚盤胞は B6 の場合は体外受精後培養して 8細胞で凍結保存。ICR は自然交配後、プラグ確認日の翌日午後に卵管を還流して 2 細胞を回収。一晩培養し、8 細胞で凍結。胚盤胞にインジェクションする場合は凍結した 8 細胞を融解し一晩培養して用意。

G) BSA：SIGMA；A8806、ミネラルオイル：SIGMA；M8410。ロットチェックはしていない。
H) シャーレ：理研、NUNC；153066、ウイルス研、Falcon；351008 または IWAKI；100-035。
I)

培地は手作りでガラスアンプルに分注し、90%窒素、5%酸素、5%二酸化炭素の混合ガスを吹き込んで封入。使用期限は設けていない。現在使用中の培地は約 2 年前に作った培地。三菱化学メディエンス（旧ヤトロン）やアーク・リソースなどから購入可能。

注意）ガラス化の過程では氷が形成されないし、凍結保護剤溶液は液体から結晶状態への変化を起こさないので、ガラス化法について論じる場合には、「凍結」の変わりに「冷却」、そして「融解」の変わりに「加温」という言葉を使うのがより適切である。（マウス胚の操作マニュアル＜第三版＞
日本語訳版第 15 章から引用）。今回は用語が増えることによる混乱を避けるため、あえて「凍結」と「融解」に統一しました。なお引用文章中の「変わり」は「代わり」の変換ミスだと思われます・・・。