Division of Biofunctional Chemistry
The Chemical Society of Japan
Vol. 30, No.1 (2015. 6. 11)p   h W

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ドメインスワップしたミオグロビン二量体のデザインと性質
奈良先端科学技術大学院大学

物質創成科学研究科

長尾聡

1.

はじめに
超分子はその制御された立体構造に基づいて新しい機能をもたらし、多くの研究者を魅了してきた。
超分子化学の発展は目覚ましく、分子の合成と金属配位を利用して、高度な機能をもつ巨大超分子が次々とつくられている。一方で、私たちの身体に目を向けると、生体内は二重らせん構造の DNA や
脂質二重膜など、天然の超分子の宝庫であることに気づく。ポリペプチドからなるタンパク質にも、超分子を形成して機能するものがある。近年、タンパク質が超分子を形成するメカニズムに着目して、タンパク質をデザインし、人工的にタンパク質超分子をつくる試みがなされている。Prof. Yeates のグ
ループは天然状態で 3 量体を形成する bromoperoxidase のサブユニットと 2 量体を形成する M1 virus
matrix protein のサブユニットをヘリックスリンカーで連結することによって、ケージ状のタンパク質
超分子の作製に成功している 1a。Prof. Tezcan のグループは cytochrome (cyt) cb562 の分子表面に導入した
ヒスチジンと金属の配位結合を利用してタンパク質を配列し、プレート状やチューブ状のタンパク質
超分子をつくり出した 1b。Prof. Hayashi のグループは myoglobin (Mb) などのヘム再構成を利用してワイヤー状のタンパク質超分子をつくり出している 1c。
私達はタンパク質超分子をつくる別のアプローチの仕方として、同一のタンパク質が分子間で構造領域を交換するドメインスワッピング現象に着目し、これまでに cyt c や Mb など様々な単量体のヘム
タンパク質から形成したドメインスワップ多量体の構造を明らかにしてきた（Figure 1）。Cyt c では C
末端領域を交換してポリマー状や環状の多量体を形成し 2a、一方、Mb では単量体で活性部位を構成している E および F へリックスと EF ループが 1 本の長い α へリックスに変化した 2 量体を形成した 2b 。

Figure1 ウマ cyt c（上）とウマ Mb（下）のドメインスワッピングによる多量体形成の模式図。
構造領域が分子間で置き換わった多量体構造をとっている。

7

Mb の全体および活性部位をみると、単量体の構造と 2 量体の部分構造は非常に似ており、2 量体ではヘムの近位ヒスチジン(His93)と遠位ヒスチジン(His64)はそれぞれ異なるプロトマーに属していることが分かる(Figure 2)。私達は、ドメインスワッピングを利用したタンパク質超分子構築のさらなる発展を目指しており、本研究では、ドメインスワッピングにより形成した Mb 2 量体の一酸化炭素（CO）
結合特性を調べ、Mb を分子デザインして異なる 2 つのヘム配位構造を有する Mb ヘテロ 2 量体を作製した。

Figure2 ウマ Mb の単量体（左）と 2 量体（右）の立体構造。上は全体、下は活性部位の構造。単量体を灰色、2 量体のプロトマーをそれぞれ桃色とシアン色で示した。
2. ミオグロビンのドメインスワップ 2 量体の一酸化炭素結合挙動
Mb は 8 本の α へリックス（A−H へリックス）と E および F へリックスの間の疎水空間にヘムをもち、ヘムには酸素の他に CO などが結合可能である。CO 結合型 Mb（MbCO）は酸素結合型 Mb よりも安定であるため、これまでに様々な分光法による測定が行われてきた。Mb にエタノールを加えて凍結
乾燥した後、得られた粉末を緩衝液に再溶解し、ゲルろ過クロマトグラフィーにより酸化型（met 型）
2 量体を精製した。CO 雰囲気下でジチオナイトを加えて Mb を還元し、MbCO を得た。MbCO の単量体と 2 量体は似た吸収スペクトルを示し、MbCO の CO 伸縮振動は、単量体および 2 量体の両方において 1932 と 1944 cm-1 に観測された。共鳴ラマン分光法により観測されたデオキシ Mb の鉄–ヒスチジ
ン伸縮振動（νFe–His）と MbCO の鉄–CO 伸縮振動（νFe–C）の振動数はそれぞれ単量体と 2 量体で変化しなかった（νFe–His、220 cm-1；νFe–C、507 cm-1） 。これらの結果より、デオキシ Mb の鉄–ヒスチジン結
合強度および MbCO の鉄–CO 結合強度は 2 量化により変化しないことが判明した。時間分解共鳴ラマ
ン散乱測定により、CO 光解離後のヘム活性部位の構造変化のダイナミクスは単量体と 2 量体で変化がないことが分かった（単量体、(5.2 ± 1.8) x 106 s-1；2 量体(6.2 ± 1.1) x 106 s-1（室温））。これらの結果より、ヘム配位構造、ヘム鉄に結合している CO 周りのタンパク質構造、タンパク質緩和挙動は単量体と 2 量体で同じであることが分かった。活性部位構造は単量体と 2 量体で似ていたが、Mb 2 量体の CO
結合速度定数（(1.01 ± 0.03) x 106 M-1 s-1 (20°C)）は単量体の CO 結合速度定数（(0.52 ± 0.02) x 106 M-1 s-1(20°C)）の約 2 倍大きかった。2 量体の CO 結合速度定数が単量体よりも大きかったのは、2 量化により Xe3 空洞（一酸化炭素が結合するサイトの一つ）と溶媒間のチャンネルが拡大したためと解釈した（Figure 3）。以上の結果より、Mb の単量体と 2 量体で活性部位構造が似ていても、タンパク質構造の変化により CO の結合特性が異なることが判明した 3。

8Figure 3 Mb の Xe3 空洞と溶媒間のチャンネル。単量体を灰色、2 量体のプロトマーを桃色とシアン色で示した。CO が結合する 4 つのサイトを黄色球で示した。
3. ドメインスワッピングによる異なった 2 つのヘム配位構造を有する Mb ヘテロ 2 量体の構築
生体内には一分子中に複数のヘムをもったマルチヘムタンパク質も存在する。これらのヘムは異なる環境下にあり、分子内の電子伝達などの機能と関わっているものがある。さて、ドメインスワッピ
ングにより形成するタンパク質超分子において、異なるヘム環境をつくるためにはヘテロな多量体を作る必要がある。ドメインスワッピングにより 2 量化した Mb で新たに形成した 2 本の長い α ヘリックス（単量体における E および F ヘリックスと EF ループから構成）間には、K78–E85 および K79–D141の塩橋が 2 つずつ計 4 つある（Figure 4）。
K78 K79
+ +
H93

+

–
–
D141 E85

H93

Mb

K78 K79 E85 D141
H93
+ + – –

K78 K79+ +––D141 E85

H93

Mb

–
– + +
D141 E85 K79 K78

Mbホモ2量体[His/H2O, His/H2O]

E78
–
H93

– –
D141 E85

E78 D79E85 D141
H93
– – –
–

K78
K79
+ +

+
H93

+ +
K141 K85

H93++
K141 + + K78
K85 K79

ED Mb

KK Mb

Mbヘテロ2量体(K78E/K79D)(E85K/D141K)[His/H2O, His/H2O]

E78
–
H93

Figure 4

D79
–

D79
–

– –
D141 E85

H68

K78
K79
+ +

H93

+ +
K141 K85+

E78 D79E85 D141
H93
– – –
–
H93

+
+
H68
K141 + + K78
K85 K79

ED Mb

VHKK Mb

Mbヘテロ2量体(K78E/K79D)(H64V/V68H/E85K/D141K)[His/H2O, His/His]

Mb ヘテロ 2 量体の分子デザイン。上段は野生型 Mb のホモ 2 量体、中段は変異型 ED Mbと変異型 KK Mb のヘテロ 2 量体、下段は変異型 ED Mb と変異型 VHKK Mb のヘテロ 2 量体。
そこで、私達はこれらの塩橋を形成しているアミノ酸を組み換えてヘテロ 2 量体をつくることを考えた。まず、78 番目と 79 番目のリシンをそれぞれグルタミン酸とアスパラギン酸に置換した変異体（EDMb）と 85 番目のグルタミン酸と 141 番目のアスパラギン酸をそれぞれリシンに置換した変異体（KKMb）を作製した。ED Mb と KK Mb にそれぞれエタノールを加えて凍結乾燥した後、緩衝液へと再溶解させると、ED Mb ではホモ 2 量体が約 8%形成していたものの 45℃で 30 分間加熱するとすべて単量体に解離し、KK Mb では全く多量体を形成しなかった。一方、ED Mb と KK Mb を 1:1 で混合した場
合では同様の操作により 2 量体が約 18%形成し、45℃で 30 分間加熱後も 2 量体が約 12%存在していた。
この結果より、ED Mb と KK Mb から成るヘテロ 2 量体が形成したことが示唆された。次に、2 量体の9分子内に異なる 2 つのヘム環境を構築するために KK Mb の 64 番目のヒスチジンと 68 番目のバリンをそれぞれバリンとヒスチジンに入れ替えた変異体（VHKK Mb）を作製した。これら 2 つの変異を Mbに導入すると、ヘムがヒスチジン/ヒスチジン配位構造をとることが知られている。VHKK Mb のみではエタノールにより多量体を全く形成しなかったが、
ED Mb と VHKK Mb を 1:1 で混合した場合では約 30%の 2 量体を形成した。この 2 量体は 45℃で 30 分間加熱後も約 24%存在していたことから、
ED Mb と VHKK Mb
から成るヘテロ 2 量体構造をとっていると推測された。
X 線結晶構造解析により、予想した通りこの 2 量体がED Mb と VHKK Mb から成るヘテロ構造をとっており（Figure 5）、2 本の長い α ヘリックス間に E78–K85、
D79–K141、D141–K79 の塩橋が形成していることが明らかとなった。また、ヘム配位構造のうち 1 つはヒスチジン/水、もう一方はヒスチジン/ヒスチジンの配位構造をとっていた。以上の結果より、プロトマーの接触
界面における塩橋の組合せをデザインすることにより、
ヘテロ 2 量体が作製でき、異なる 2 つのヘム配位構
Figure 5 ED Mb と VHKK Mb のヘテロ 2 量体。
造をもつヘテロ 2 量体も作れることが示された 4 。 上は全体、下は活性部位構造。2 量体のプロト
マーをそれぞれ緑色とオレンジ色で示した。
4. おわりに
今回、私達はドメインスワッピングにより形成した Mb 2 量体の CO 結合挙動を明らかにし、異なる
2 つのヘム配位構造をもつ Mb ヘテロ 2 量体の作製に成功した。今後、タンパク質超分子の研究は超構造をとることで如何に高次機能を発現するかにシフトしていくと予想される。本研究の成果は高次機能を発現する分子設計の知見を与えると考えられる。
謝辞
本研究は、私の所属している奈良先端大物質、廣田俊教授の研究室で行われました。廣田教授ならびに学生の皆様、研究員として実験していた南華大学の林英武教授に感謝申し上げます。共鳴ラマン
スペクトル測定では大阪大学大学院理学研究科の水谷泰久教授、石川春人講師に、X 線結晶構造解析
では兵庫県立大理学部の樋口芳樹教授、庄村康人助教（現 茨城大学理工学研究科准教授）にお世話になりました。皆様に深く感謝致します。本研究の一部は日本学術振興会科学研究費若手研究 B (No.
24750163)の助成により実施されました。
5. 参考文献[1] (a) Y. T. Lai, D. Cascio, T. O. Yeates, Science 2012, 336, 1129.;(b) J. D. Brodin, X. I. Ambroggio, C. Tang, K.
N. Parent, T. S. Baker, F. A. Tezcan, Nat. Chem. 2012, 4, 375-382.;(c) K. Oohora, A. Onoda, H. Kitagishi,
H. Yamaguchi, A. Harada, T. Hayashi, Chem. Sci. 2011, 2, 1033-1038.
[2] (a) S. Hirota, Y. Hattori, S. Nagao, M. Taketa, H. Komori, H. Kamikubo, Z. Wang, I. Takahashi, S. Negi, Y.
Sugiura, M. Kataoka, Y. Higuchi, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 2010, 107, 12854-12859.;(b) S. Nagao, H.
Osuka, T. Yamada, T. Uni, Y. Shomura, K. Imai, Y. Higuchi, S. Hirota, Dalton Trans. 2012, 41,11378-11385.
[3] S. Nagao, H. Ishikawa, T. Yamada, Y. Mizutani, S. Hirota, J. Biol. Inorg. Chem. 2015, 20, 523–530.
[4] Y. W. Lin, S. Nagao, M. Zhang, Y. Shomura, Y. Higuchi, S. Hirota, Angew. Chem. Int. Ed. 2015, 54,
511-515.

10共焦点顕微ラマン分光法を用いた微細藻類の生体分子イメージング
東京農工大学大学院工学研究院 梁 越
1．はじめに
微細藻類は高等植物と比較して生育速度が速く、また食物原料と競合しないため、バイオ燃料として使用できる脂質やサプリメントとして付加価値の高いカロテノイド等の有用物質生産株として利用されている。この様な生体分子の合成機構のダイナミクスを理解することは、有用物質の高生産や高品質化において重要である。一般に脂質やカロテノイドの解析にはガスクロマトグラフ質量分析 (Gas ChromatographMass Spectroscopy: GC-MS) や高速液体クロマトグラフィー (High Performance Liquid
Chromatography: HPLC) が用いられている。GC-MS や HPLC は細胞から抽出工程を経る in vitro 解析であり、in vivo とは異なる環境で測定せざるを得ない。実際に脂質やカロテノイドが細胞内のどこで合成され、またどの様に輸送されていくのかというダイナミクスを理解するためには、細胞を非破壊的にモニタにングできる解析手法が必要となる。この様な in vivo ダイナミクス解析は、有用物質の生産過程や輸送経路の機構解明に寄与できると考えられ、生産性の向上や品質の改善に重要である。
本研究では、脂質・カロテノイド等の生体分子の合成過程や輸送経路の解明に向けて、生体分子の invivo ダイナミクス解析法の確立を目指した。具体的には、非破壊的に試料の定性・定量解析が可能な顕微ラマン分光法を使用し、解析モデル生物としてオイル高蓄積珪藻 Fistulifera solaris JPCC DA0580 株を用いた。顕微ラマン分光法は試料の特定領域へ励起光を照射することで、領域内の各点からラマンスペ
クトルを取得し、ラマンスペクトル内の特定のバンド強度面積に基づき分子の分布を可視化するものである (Puppels et al. 1990) 。さらに顕微ラマン分光法は、分子の分布を可視化するだけでなく、ラマン
散乱光の強度に基づく標的分子の定量解析も可能である (Lin et al. 2010) 。細胞内でのダイナミクス
解析においては、各生体分子の詳細な組成まで解析できることが望ましく、顕微ラマン分光法を活用したさらなる解析技術の確立が必要である。当研究室では、脂質高蓄積株である海洋羽状目珪藻 Fistulifera

solaris JPCC DA0580 株を単離している (Matsumoto et al. 2014) 。当該株はバイオディーゼル燃料(BDF) として利用可能なパルミチン酸やパルミトレイン酸を主とした脂質を高蓄積 (60% (w/w)) するた
め、BDF 生産の候補株として期待されている。また、F. solaris は細胞内に 2 つの油滴と呼ばれるオルガ
ネラと１つの葉緑体をもつことから、顕微ラマン分光法で解析する対象として適していると考えられる。
本研究では、ラマンスペクトルの解析としてフィッティング解析による細胞内の脂肪酸組成解析と局在イ
メージングを行った。さらに、励起波長および励起光出力を検討し、同一細胞内でのカロテノイドの組成解析と局在変化をモニタリングした。
2．顕微ラマン分光装置による in vivo 脂肪酸解析
532

nm Nd:YAG レーザー (COHERENT,Compass™315M

Diode- Pumped Laser, Santa Clara, USA) 、ポリクロメータとして分光器 (SOLAR TII Ltd, MS3504i, Tokyo,

11

Fig. 1 The schematic of experimental set-up of
the 532 nm excited Raman microspectrometer.

Japan) 、 検出器として Electron
Multiplaying CCD (ANDOR TECHNOLOGY,
Newton, Belfast, Northern Ireland) を備えた倒立型顕微鏡 (Nikon, ECLIPSE Ti,
Tokyo, Japan) を用いて脂肪酸解析を行うための顕微ラマン分光装置を構築した (Fig.
1) 。細胞培養は 1 段階目で細胞増殖を行い、2 段階目に脂質蓄積を誘導する 2 段階培養を用いた。2 段階培養開始から 0、24、48、72
時間後の藻体を回収し、マイクロキャビティー

アレイとアガロースゲルを組み合わせた方法によってイメージング測定時の細胞移動を防いだ (Osada et al. 2014) 。捕捉した細胞に対し、励起波長 532 nm の共焦点顕微ラマン分光装置を用いてたラマンイ
メージング測定を行い、取得したスペクトルのバンド強度面積に基づき、タンパク質(1,003 cm-1)、カロテノイド(1,526 cm-1)、

Fig. 2 Raman spectra of F. solaris and gallery of Raman
images and fluorescent images obtained at different time
points at 0, 24, 48 and 72 h after lipid accumulation induction.
A: Raman spectra of oil bodies, chloroplast, extracted lipid,
and agarose gel.B: (a) Bright field image of F. solaris. Scalebar; 5 µm. (b-d) Raman images at (b) 1,003 cm-1 (protein), (c)1,526 cm-1 (carotenoid) and (d) 1,445 cm-1 (lipid). (e)fluorescent images of cells stained with BODIPY 505/515.

脂質(1,445 cm-1)のラマンイメージングを構築した(Fig. 2)。構築したラマンイメージから、F.

solaris 内油滴サイズの増加が観察され、タンパク質(1,003 cm-1)とカロテノイド (1,520 cm-1) は葉緑体と考えられる領域に局在していた。また、BODIPY 505/515
によって脂質を染色し、共焦点レーザー蛍光顕微鏡によって蛍光画像を撮像したところ、得られた蛍光画像と脂質 (1,445 cm-1) のラマンイメージは同様の局在を示していた。したがって、顕微ラマン分光装置を用いることで染色することなくタンパク質、カロテノイド、脂質の細胞内分布を可視化できることが示された。次に、脂肪酸のフィッティング解析に組み込む標品スペクトルを取得するために脂肪酸ライブラリを構築した。測定する脂肪酸標品はエイコサペンタエン酸（EPA）、アラキドン酸、リノレン酸、ステアリン酸、パルミトレイン酸、パ
ルミチン酸、ミリスチン酸の 7 種類を準備し、励起波長

Fig. 3 Gallery of Raman spectra obtained fromstandard fatty acids.

532 nm、出力 1 mW、露光時間 10 秒で測定した(Fig. 3)。
取得した標品スペクトルライブラリから、脂肪酸の指紋領域は 700 - 1,800 cm-1 であると示唆された。
そこで、フィッティング領域として 700 - 1,800 cm-1 の領域に着目した。また、脂質のバンドが観測されない領域にマスク (フィッティング解析する領域から除外すること) をかけることで、脂肪酸以外のバンドの影響を最小限にできると考えられた。そこで、カロテノイドやタンパク質は 1,004、1,160、
1,525 cm-1 付近にバンドが観測されるため (Abdullah Chandra Sekhar Talari et al. 2014) 、フィッテ
ィング領域は 988 – 1,722cm-1 で、マスク領域は 988 - 1,048、1,112 -1,215、1,508 -1,640 cm-1 とし12た。得られた抽出した脂肪酸メチルエステルと生細胞のスペクトルに対し、最適化したフィッティン
グ・マスク領域、バックグラウンド関数でフィッティング解析を行った。本研究で用いているフィッティング解析は以下の手順で行った。まず、EPA、パルミトレイン酸、パルミチン酸の標品スペクトルを線形結合で表現した。次に、高次関数をバックグラウンドとして組み合わせた、最小二乗法によって取得したラマンスペクトルを最も再現する各係数を算出した。その後、算出された係数に基づき脂肪酸組成を算出した。得られた脂肪酸組成比と GC-MS 解析結果を比較することでラマンフィッティング解析の精度の評価を行った。さらに、抽出した脂肪酸メチルエステルの解析結果と比較することで in vivo 脂肪
酸組成を評価した（Table 1）。その結果、脂肪酸メチルエステル試料の GC-MS 解析結果とフィッティン
グ解析結果が一致し、フィッティング解析の有効性が示された。そこで、in vivo での油滴内の脂肪酸組成を解析した結果、細胞から抽出した脂肪酸組成と比較して EPA（C20:5n3）

Table 1 Fatty acid compositions analyzed by GC-MS and Raman fitting analysis.
Fatty acid compositions are represented as mean

含量に差異が見られた。
これは、in vitro 解析では、油滴以外の EPA を含む脂肪酸が混入したためであると考えられた。このことからラマンイメージングの in vivo 脂肪酸解析における優位性が示された。
3．顕微ラマン分光法による in vivo カロテノイド解析
上記までの検討において、532nm の励起光下では、色
素の光退色が認められた。そこで、光退色の影響を低減
する取り組みとして、1064nm の励起光を利用したラマン
イメージングを行った。光源として、ダイオード 1,064nm 励起 Q-switched Nd:YAG laser Nd:YAG レーザー
(Spectra Physics T40-X30S- 106Q, repetition rate 10
kHz, pulse duration 30 ns) 、ポリクロメータとして分光器 (HORIBA Jobin Yvon, iHR320, 150 grooves/mm
grating, Kyoto, Japan) 、 検出器として CCD (Andor,

Fig. 4 The schematic of experimental set-up of
the 532 nm excited Raman microspectrometer.

iDus DU420A-BV, Belfast, Northern Ireland) に
InP/InGaAsP 近赤外イメージインテンシファイア(Hamamatsu Photonics, 26 ×128 pixels, quantum
efficiency approximately 4% for 0.9-1.4 lm) を装備させ、ピエゾ電動ステージ (Madcity, Nano-LP-100, Zürich,
Switzerland) を外付けした倒立型顕微鏡 (Nikon,ECLIPSE
Ti, Tokyo, Japan) を用いて顕微ラマン分光装置を構築した (Fig. 4)。この装置を用いて F. solaris におけるカロテノイドの光退色評価、および励起光による生育への影響評価を行い、モニタリングに向けた励起光出力を検討した。次に 6 時間毎にラマンイメージング測定を行い、細胞内カロテノイドの局在をモニタリングした。さらに in

13Fig. 5 Evaluation of photodamage based on theintensity at 1,526 cm-1 (carotenoids C=C
stretch).

vivo 脂肪酸組成解析と同様のフィッティング
解析法を用いて、in vivo カロテノイド組成解析を行った。出力 5 mW 以下では光退色が生じず、励起光による生育への顕著な影響は示されなかった(Fig. 5)。さらに、細胞分裂に伴う同一細胞ラマンイメージング測定を行い、in

vivo カロテノイド局在および組成解析が可能であった（Fig. 6）。以上から本研究によって、1064nm の励起光を用いた顕微ラマン分光法とフィッティング解析によって微細藻類の脂質・カ

Fig. 6 Time-lapse bright field and constructed Raman
images of carotenoid in F. solaris.

ロテノイドの in vivo ダイナミクス解析が可能であった。
4．おわりに本研究から、顕微ラマン分光法と多変量解析を組み合わせることで微細藻類における非侵襲的な単一生細胞 in vivo ダイナミクス解析手法としての応用が示された。また、バイオディーゼル燃料生産においては、大量培養した微細藻類の藻体収穫時期の決定のために、細胞内の脂質、カロテノイド蓄積量のモニタ
リングは極めて重要である。本研究で確立した手法は抽出やメチルエステル化などの化学反応を行う手法と比較して、簡易かつ迅速に、脂質とカロテノイドの定量・定性解析ができる。そのため、このような培養工程にある藻体の評価に適用できると考えられることから工学的意義は大きい。
謝辞
本研究の遂行にあたり、熱心なご指導を賜りました東京農工大学大学院工学研究院生命分子工学・海洋
生命工学研究室

田中剛教授、吉野知子准教授に心から感謝申し上げます。また、顕微ラマン分光測定においては、台湾国立交通大学

濱口宏夫教授、早稲田大学

先端科学・健康 医療融合研究機構

安藤正

浩 博士にご助言を賜り、厚く御礼申し上げます。本研究は、JST-CREST からの助成により実施されました。
参考文献・注釈
Puppels GJ, Demul FFM, Otto C, Greve J, Robertnicoud M, Arndtjovin DJ, Jovin TM. 1990.
Studying single living cells and chromosomes by confocal Raman microspectroscopy. Nature347(6290):301-303.
Lin C-C, Kuo M-T, Chang H-C. 2010. Review: Raman Spectroscopy - A Novel Tool for Noninvasive
Analysis of Ocular Surface Fluid. Journal of Medical and Biological Engineering 30(6):343-354.
Matsumoto M, Mayama S, Nemoto M, Fukuda Y, Muto M, Yoshino T, Matsunaga T, Tanaka T. 2014.
Morphological and molecular phylogenetic analysis of the high triglyceride-producing marine
diatom, Fistulifera solaris sp nov (Bacillariophyceae). Phycological Research 62(4):257-268.
Osada K, Hosokawa M, Yoshino T, Tanaka T. 2014. Monitoring of cellular behaviors byMicrocavity array-based single-cell patterning. Analyst 139(2):425-430.

14

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E-mail: seitai27@chem.eng.osaka-u.ac.jp HP: http://www-bfc.mls.eng.osaka-u.ac.jp/seitai27/

15

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URL: http://seitai.chemistry.or.jp/   mail to: seitai@chemistry.or.jp$,. *