目次

＜第123回研究会（平成26年９月27日）＞
テーマ：循環器研究の新たな展開
１．ゼブラフィッシュを用いた心臓・血管形成のイメージングによる研究
福原茂朋・中嶋洋行・福井 一・望月直樹（国立循環器病研究センター
研究所 細胞生物学部）… ………………………………………………… １
２．SPring-8放射光を用いた小動物心血管機能のin vivoイメージング
白井 幹康（国立循環器病研究センター研究所 心臓生理機能部）……… ９＜第124回研究会（平成26年12月５日）＞
特別講演
１．非コードRNAによる遺伝子発現制御機構を利用した遺伝子組換えアデノウイルスの開発
櫻井 文教（大阪大学大学院 薬学研究科・分子生物学分野）………… 11
２．サルレトロウイルスによるニホンザル血小板減少症
岡本 宗裕（京都大学霊長類研究所

人類進化モデル研究センター）…… 18＜一般講演＞
会員の発表14題…………………………………………………………… 19＜第125回研究会（平成27年３月６日＞
テーマ：関西実験動物研究会へようこそ
１．幹細胞の多能性維持と分化の分子機構研究
依馬 正次（滋賀医科大学 動物生命科学研究センター 幹細胞・ヒト疾
患モデル研究分野、科学技術振興機構 さきがけ）… ………………… 35
２．糖鎖はさまざまな生命現象の鍵となっている
浅野 雅秀（京都大学大学院 医学研究科附属動物実験施設）………… 38

＜第126回研究会（平成27年６月12日＞
テーマ：エピジェネティクス研究の最前線
１．膵β細胞機能のエピゲノム制御
木戸 良明（神戸大学大学院 保健学研究科病態解析学領域 分析医科学分野）………………………………………………………………………… 43
２．発生・分化におけるエピジェネティクス
仲野 徹（大阪大学大学院 生命機能研究科・時空生物学／医学系研究科・病理学）………………………………………………………………… 44＜トピックス＞
創薬の隘路「Phase 2 Attrition」の克服に向けて－実験動物学の進展への期待榑林 陽一（日本医療研究開発機構 創薬支援戦略部）………………… 48＜関西実験動物研究会だより＞………………………………………………………… 49＜幹事会、評議員会、総会の議事概要＞……………………………………………… 50＜維持会員名簿＞………………………………………………………………………… 55＜評議員名簿＞…………………………………………………………………………… 56＜会長、幹事、監事名簿＞……………………………………………………………… 57＜収支・予算、会則＞…………………………………………………………………… 58

＜第123回研究会（平成26年９月27日）＞
テーマ：循環器研究の新たな展開
１．ゼブラフィッシュを用いた心臓・血管形成のイメージングによる研究
福原茂朋・中嶋洋行・福井 一・望月直樹（国立循環器病研究センター
研究所 細胞生物学部）
２．SPring-8放射光を用いた小動物心血管機能のin vivoイメージング
白井 幹康（国立循環器病研究センター研究所 心臓生理機能部）

ゼブラフィッシュを用いた心臓・血管形成のイメージングによる研究

国立研究開発法人国立循環器病研究センター研究所
福原茂朋・中嶋洋行・福井

細胞生物学部一・望月直樹

要旨：
生体での循環器は、心臓の拍動・血流など動的であるために、生きたままの観察により生理学的な新たな知見が得られる。発生時に心臓や血管を構築する心筋前駆細胞の移動、血管内皮・壁細胞の移動や運動により初期臓器が形成され、さらにリモデリングによって成熟循環器となる。この動態を観察するためには、
ゼブラフィッシュのような体外発育、成長速度の速さ、透明性があるモデル動物が有効である。透明性を利点として、蛍光蛋白質を遺伝子改変により導入することで、循環器構築細胞を蛍光蛋白で生きた胚を用いて観察が可能である。
本稿ではゼブラフィッシュを用いたイメージングにより、如何に心臓初期形成が生じるのか、また、如何に血管形成の新規の情報伝達を明らかにしたかを例にして、イメージングの利点を概説する。

Key words : ゼブラフィッシュ、イメージング、初期発生、心臓、血管― 1 ―—はじめに—循環器は、心臓と脈管（血管とリンパ管）によって構成される器官である。閉鎖系の循環システムのないショウジョウバエでは、酸素や栄養素は拡散によって組織に行き渡るが、心臓と血管を有するゼブラフィッシュでは、閉鎖系循環システムが発生する。初期発生で観察できるゼブラフィッシュ心臓形成や血管形成は、哺乳類と同様に、時期・部位特異的な遺伝子発現によって厳密に制御される。これらの遺伝子群は、ゼブラフィッシュと哺乳類では、ほぼ保存されていると言える。従ってゼブラフィッシュが発生メカニズムを探るモデル生物
として広く利用されている。
ゼブラフィッシュ胚は、体外で発育し、かつ、その発生速度は速く、数日以内に他の臓器形成に先駆けて循環システム（心臓・血管）が構築される。なお、胚が透明であるために発生を容易に観察できるだけではなく、遺伝子導入も簡単である。蛍光蛋白質の発現も可能であり、発生時の臓器特異的あるいは時期特異的な観察もできる。これまでに心筋細胞特異的に活性化されるプロモータ
ーとして cardiac myosin light chain 2 (cmlc2, myl7)、血管内皮細胞では
fli1, flk1、リンパ管では flt4、周細胞では pdgfrb が明らかにされている。遺伝子導入には、めだかトランスポゾン(Tol2) を用いることができるので、プ
ロモーター下流に蛍光蛋白質やプローブをコードする遺伝子を挿入し、胚に注入することで目的分子を発現するトランスジェニック個体の作成が可能である。
また詳細は後述するが、Gal4-UAS システムを用いる工夫もある(1)。組織特異的に Gal4/VP16 を発現させ、UAS の下流にプローブや蛍光蛋白質をコードする遺伝子をつなげたレポーターフィッシュと交配することにより組織特異的に分子を高発現するシステムである。
本稿では、臓器特異的に蛍光蛋白質を発現させて形態を観察するとともに、転写の活性化をモニターするプローブを発現させることによりシグナルを可視化して形態形成と情報伝達を見た例を報告する。特に、心臓形成と血管形成の新たな知見を紹介する。

—原始心筒形成のための心筋前駆細胞の移動メカニズムのイメージング技術に
よる解明—

― 2 ―

両側の側板中胚葉から心臓前駆細胞が生まれ、左右の心臓前駆細胞が中央に遊走して原始心筒を形成する。この心筋前駆細胞の正中線への移動には、細胞の運動性のみならず、細胞が移動する足場となる環境も重要と考えられていた。
内胚葉が中胚葉組織である心筋前駆細胞の足場となる可能性が考えられる。以前、我々は、スフィンゴシンー１－燐酸(S1P)輸送体 Spns2 の変異体が二股心臓を呈すること(2)、Stainier 博士のグループも S1P の受容体 S1P2 の変
異体が二股心臓を呈することを報告している。発生期の S1P シグナルが心臓の移動に重要であることを想定していた。しかし、どのように S1P シグナルが心臓の移動を調節しているのかは明らかでなかった。S1P の下流で機能し、臓器サイズ決定因子でもある転写共役因子 Yap1 に着目して S1P シグナルによる心臓前駆細胞の正中への移動を検討した(3)。
Yap1 の発現抑制を行うと、予想どおり二股心臓を呈したことから、
S1P-Yap1 を介したシグナルの重要性は確認できた。Spns2 は卵黄合胞体層に発現するために S1P が作用するのは、直接心臓前駆細胞に作用するかある
いはこれまでに S1P2 を発現すると報告されている内胚葉のいずれかである。
そこで、Yap1 の発現抑制個体で内胚葉の形態を Tg(sox17:EGFP)（内胚葉特異的プロモーターsox17 依存性に EGFP を発現するトランスジェニックゼ
ブラフィッシュ）で観察したところ、野生型とは異なり内胚葉に大きな欠損が生じた。また、心筋細胞を Tg(myl7:nls-mCherry)(心筋細胞で活性化される心筋ミオシン軽鎖のプロモーター依存性に mCherry を発現するトランスジェニ
ックフィッシュ)と交配することにより、内胚葉と心筋細胞を同時に観察すると、内胚葉の欠損が見られる個体で、同時に二股心臓となっていることから（図１）、内胚葉欠損により両側側板中胚葉の心筋前駆細胞が正中に移動するには、
S1P-Yap1 のシグナルが必須であることがわかった。しかも、内胚葉で、このシグナル伝達系が機能することが重要であることが明らかとなった。さらに、
Yap1 の核内移行が中胚葉で起きているのかを Yap1 依存性に転写が活性化される Tg(eef1a1l1:galdb-hTEAD2deltaN);Tg(uas:GFP)（すべての細胞の中で Yap1 が核内に移行してアミノ末端を欠く human TEAD2 に結合すると、レポーターの GFP が発現する個体）を作製した（図２）。本トランスジェニッ
クフィッシュは、Gal4 DNA 個の結合配列と humanTEAD のアミノ末端を― 3 ―融合しているために、Gal4 依存性に uas に結合することで GFP の転写が生じることになる。この個体と Tg(sox17:mCherry)を交配して観察したところ
mCherry 陽性の内胚葉細胞に GFP を検出したために、内胚葉で Yap1 が核内移行することがわかった。以上のように、内胚葉と心筋細胞の配置や移動を形態学的に経時的に観察するとともに、転写活性もモニターすることで内胚葉での S1P2-Yap1 シグナルが内胚葉の形態維持に必要で、これが無いと心筋前駆細胞の移動が障害されることをイメージングによって証明できた。

—尾側静脈叢から尾側静脈を形成するシグナル伝達の解明—
ゼブラフィッシュの 24 時間胚では、尾側にまず静脈叢が形成され背側大動脈からの血流を尾側から頭側に還流する。その後、静脈叢がリモデリングを経て一本の尾側静脈となる。この過程は、ゼブラフィッシュの血管形成過程でも不明な点が多かった。大動脈から節間血管が伸張する時には、背側に向って大動脈内皮細胞が運動・遊走するが、尾側静脈叢形成時にも、腹側にむかって静脈内皮細胞が伸張しながら移動する。2 日目胚では、さらに、この静脈叢から未熟な尾側静脈が形成され、4 日目胚では管腔を有する成熟尾側静脈となる。
βカテニンは、内皮細胞間接着を制御する内皮細胞カドヘリンに結合し、アクチン骨格系の制御に関わる。しかし、これだけではなく、Wnt の下流で機能する転写共役因子である。静脈血管内皮細胞では、静脈層のリモデリング（細胞間接着の減弱や増強の繰り返し）にβカテニンシグナルが関与するのではな
いかと考えた。このため、βカテニン依存性に GFP が転写されるシステムを
Yap1 と同様に Gal4-uas システムを用いて構築した（図２）。
Tg(fli1:tcf-deltaC/gad4DBD)フィッシュは転写因子 Tcf の C 末端を欠損する代わりに Gal4 DNA 結合ドメインを融合している（図２）。このためにこのフィッシュと Tg(uas:gfp)と交配することで、GFP が発現する細胞ではβカテニンが核内移行したことをモニターできることになる。
このβカテニン転写モニターリングフィッシュの GFP 発現部位を観察した
ところ、尾側静脈叢の最も腹側側で GFP が強く発現しており、この細胞群が未熟尾側静脈構成細胞となることが判った（図３）。さらに、成熟過程でもこの
尾側静脈内皮細胞では持続的に GFP が陽性であった。尾側静脈叢では、bone― 4 ―morphogenetic protein (BMP) が必須であることが報告されていたので、BMP を強制発現させたところ、通常見られる腹側への静脈細胞の遊走だけではなく、背側への過剰な静脈内皮細胞の増殖・遊走が観察された。これらの過剰遊走細胞では、GFP の発現が亢進していた。一方、noggin を発現させてBMP シグナルを抑制すると静脈叢の形成が阻害されるとともに、GFP の発現も抑制された。このことから、BMP がβカテニンの局在を決定する上流因子
として、尾側静脈叢形成から尾側静脈の成熟過程に必要であることがわかった。
βカテニンと転写が on Tg になっている尾側静脈腹側細胞でどのような遺伝子が転写されているのかを調べた。(fli1:tcf-deltaC/gal4DBD):(uas:gfp);Tg(flk1:mCherry)フィッシュの mCherry+GFP+ (βカテニンの転写が on になっている血管内皮細胞) と mCherry+GFP- (βカテニンの転写がoff になっている血管内皮細胞) のそれぞれの遺伝子発現を RNA-seq で解析した。その結果、前者では、BMP によって発現が増加する遺伝子、静脈内皮細胞で発現するといわれている遺伝子が同定された。さらに Aggf1 遺伝子（血管異常と骨の肥厚が特徴的な Klippel-Tranauny 症候群の原因遺伝子）の発現が増加していた。正常では、BMP 遺伝子の下流で Aggf1 の発現が制御され、骨形成・静脈形成にかかわることが示唆された(4)。

—おわりに—
本稿では、ゼブラフィッシュを用いた蛍光イメージングにより、心臓・血管の形態観察とともに情報伝達機構を明らかにすることができた。組織特異的に活性化するプロモーターで蛍光蛋白質を発現させて、組織内の特定の細胞を可視化する技術は繁用されている。しかし、ゼブラフィッシュを生きたまま時間
経過とともに観察することで、さらに詳細な形成機構を解析することができる。
また、蛍光色を複数使用することにより、いくつかの臓器・組織を同時に観察することで、臓器間—組織間の相互調節機構を予測することもできる。
臓器・組織形成時には個々の細胞の機能や動きを調節する情報伝達系が重要であり、形態変化と同時に情報伝達分子の活性化や転写の増減を見ることで形態形成における調節機構の解明に繋がる。実際我々は、今回は 2 例を取り上げて紹介したが、それ以外にも血管新生に置け先導端細胞の動きとそれを調節す― 5 ―る細胞骨格調節分子を同時に観察して、先導端細胞の遊走機構を解明している(5)。他にも血液の流れによる shear stress と転写因子の調節機構、心筋細胞の細胞分裂と増殖促進因子の同定に挑戦している。なお、本稿で紹介した成果
は review としても報告している（６）。

図１．内胚葉細胞は sox17 プロモーターによって GFP で標識され、心筋細胞
は nuclear localization signal タグ付 mCherry で標識されるトランスジェ
ニックフィッシュに control (ctrl) morpholino (MO) ：左、yap1 MO : 右を注入して内胚葉と心筋前駆細胞の位置を調べた （受精後 28 時間胚 28
hours post-fertilization (hpf)）)。Yap1 の発現抑制個体では GFP で標識される内胚葉が大きく欠損していることがわかる。

― 6 ―

図 2. Gal4 DNA binding domain (DBD)と転写因子 TF 融合蛋白を発現させ転写共役因子(cofactor)が核内に移行すると EGFP が発現するシステム。心臓発生の場合には Yap1 を、尾側静脈の形成では、カテニンを cofactor とすることでそれぞれの内因性因子の核内移行を観察できた。

図３. T（Tcf）と Gal4DBD の融合蛋白質にカテニンが結合すると緑色蛍光が光るトランスジェニックフィッシュを観察した。血管内皮細胞は mCherry で光るので、最腹側の血管内皮細胞が緑色になっているので、ここの細胞ではカ
テニンが核内に移行していることがわかる。CV, caudal vein; CVP caudal
vein plexus

― 7 ―

参考文献
(1) Halpern,M.E., J.Rhee, M.G.Goll, C.M.Akitake, M.Parsons, and S.D.Leach.
2008. Gal4/UAS transgenic tools and their application to zebrafish.
Zebrafish. 5: 97-110.
(2) Kawahara,A., T.Nishi, Y.Hisano, H.Fukui, A.Yamaguchi, and N.Mochizuki.
2009. The sphingolipid transporter spns2 functions in migration of zebrafish
myocardial precursors. Science 323: 524-527.
(3) Fukui,H., K.Terai, H.Nakajima, A.Chiba, S.Fukuhara, and N.Mochizuki. 2014.
S1P-Yap1 signaling regulates endoderm formation required for cardiac
precursor cell migration in zebrafish. Dev. Cell 31: 128-136.
(4) Kashiwada,T., S.Fukuhara, K.Terai, T.Tanaka, Y.Wakayama, K.Ando,
H.Nakajima, H.Fukui, S.Yuge, Y.Saito, A.Gemma, and N.Mochizuki. 2015.
beta-catenin-dependent transcription is central to Bmp-mediated formationof venous vessels. Development 142: 497-509(5) Wakayama,Y., S.Fukuhara, K.Ando, M.Matsuda, and N.Mochizuki. 2015.
Cdc42 Mediates Bmp-Induced Sprouting Angiogenesis throughFmnl3-Driven Assembly of Endothelial Filopodia in Zebrafish. Dev. Cell 32:
109-122.
(6) Fukuhara, S., Fukui, H., Wakayama, Y., Ando. K., Nakajima, H., andMochizuki, N. 2015. Looking back and moving forward: recent advances inunderstanding of cardiovascular development by imazing of zebrafish. Dev.
Growth Differ. 57: 333-340.
—謝辞—
本稿を終えるにあたり、2014 年大阪大学で講演の機会をいただきました関西
実験動物研究会皆様、また今回このようにまとめるきっかけを頂戴いたしました三重大学

山本好男先生、国立循環器病研究センター

申し上げます。

― 8 ―塩谷恭子先生に深謝― 9 ―

＜第124回研究会（平成26年12月５日）＞
特別講演
１．非コードRNAによる遺伝子発現制御機構を利用した遺伝子組換えアデノウイルスの開発
櫻井 文教（大阪大学大学院 薬学研究科・分子生物学分野）
２．サルレトロウイルスによるニホンザル血小板減少症
岡本 宗裕（京都大学霊長類研究所＜一般講演＞
会員の発表14題

人類進化モデル研究センター）

非コード RNA による遺伝子発現制御機構を利用した遺伝子組換え
アデノウイルスの開発
櫻井

文教

大阪大学大学院薬学研究科 分子生物学分野 准教授

１．はじめに治療上、有効なタンパク質などをコードした遺伝子を医薬品として投与することにより疾患を治療する遺伝子治療は、癌や先天性遺伝子疾患等の各種難治性疾患に対する革新的治療法として大きな期待を集めている。世界で最初の遺伝子治療臨床研究は、1990
年、米国にてアデノシンデアミナーゼ（ADA）欠損による重症複合型免疫不全症の患者に対して、レトロウイルスベクターを用いて実施された。その後、遺伝子治療臨床研究において死亡事故や白血病発症などの有害事象が発生するなど、遺伝子治療の安全性・有効性を疑問視する声も上がったが、地道な基礎研究の積み重ねの結果、遺伝子治療は着実な進歩を遂げ、有効症例も数多く報告されるようになってきた。また 2012 年には先進国で初めての遺伝子治療薬（リポ蛋白リパーゼ発現アデノ随伴ウイルスベクタ
ー、商品名；Glybera、適応症：脂質代謝異常症）が承認された。今後、遺伝子治療の対象が先天性遺伝子疾患のみならず、感染症、生活習慣病などの後天性疾患にも広がり、
遺伝子治療がますます広がっていくものと期待されている。遺伝子治療薬の実用化に向
けては、治療遺伝子を安全かつ高効率に標的細胞に導入し、かつ治療に必要な量のタン
パク質を発現可能な遺伝子導入ベクターが必要不可欠である。すなわち、高機能かつ安全な遺伝子導入ベクターの開発が遺伝子治療成功の鍵を握っている。これまでに遺伝子導入ベクターとしては、レトロウイルスベクター、アデノウイルス（Ad）ベクター、
アデノ随伴ウイルスベクター、プラスミド DNA ベクターなど、様々なタイプのベクターが開発されてきた。これらの遺伝子導入ベクターの基本骨格は、その多くが 1990 年
以前に開発されている。その後、基礎研究の積み重ねによりその遺伝子導入特性が明らかとなるとともに、これらを基盤とした様々な改良型ベクターが開発されている。現在
ではその遺伝子導入特性の違いより、疾患に応じて使い分けられているのが現状である。
２．アデノウイルスベクターについて
5 型ヒトアデノウイルス（Ad）を基本骨格とする Ad ベクターは、遺伝子治療臨床研
究の約 22％で使用されるなど、最も汎用されている遺伝子導入ベクターである。Ad ベ
クターは、高タイターのウイルスが回収可能であること、物理的に安定であること、分裂細胞・非分裂細胞の両者に高効率に遺伝子導入可能であることなど、遺伝子導入ベク
ターとして多くの特長を有していることから、遺伝子治療研究のみならず、遺伝子機能― 11 ―

解析をはじめとする基礎研究においても汎用されている。
Ad は約 36kb の二本鎖 DNA をゲノムとして有しており、自己増殖に必須の E1 遺伝
子を遺伝子工学的に欠失させることにより、理論上、他の Ad 遺伝子が発現せず、自己増殖不能となっている。しかしながら実際には、E1 遺伝子非依存的にわずかながら Ad
遺伝子が発現することにより１）、Ad タンパク質そのものによる細胞障害や Ad タンパ
ク質に対する細胞性免疫が誘導され、Ad ベクター投与後、組織障害が誘導されてしまう。特に Ad ベクターは全身投与後、そのほとんどが肝臓に集積し遺伝子発現を示すため、強い肝障害を誘導することが問題となっている。これらの問題点を克服するため、
E1 遺伝子のみならず E2A 遺伝子や E4 遺伝子（の一部）を欠損させた第 2 世代の Ad
ベクター、さらにほぼ全ての Ad 遺伝子を欠失させた Helper-dependent Ad ベクターが開発されている。しかしながら、これらの改良型 Ad ベクターは、その調製に特別なパッケージング細胞が必要であることや高タイターのベクターが回収できないことなどといった問題点を有しており、広く普及するのに至っていないのが現状である。
３．マイクロ RNA について
マイクロ RNA（miRNA）は、21～25 塩基長の一本鎖非コード RNA で、真核生物
で広く発現しており、mRNA の転写後段階において標的遺伝子の発現を抑制する。
miRNA はゲノムより主に pol II promoter によって前駆体（pri-miRNA）として転写される。Pri-miRNA では、配列内部に存在する相補配列が塩基間水素結合により二本鎖を形成することでヘアピンループ構造をとる。Pri-miRNA は、核内にて Drosha に
よって Pre-miRNA へとプロセシングされたのち、Exportin-5 によって細胞質へと輸送される。Pre-miRNA は、60～90 塩基長のステム―ループ構造を有しており、細胞質のRNaseIII 酵素である Dicer によって切断されることにより、miRNA duplex となる。
その後、Argonaute 2 を基本コンポーネントとする RNA-induced silencing complex(RISC)に取り込まれたのち、一方の鎖が放出されることにより、成熟した RISC となる。
RISC は、miRNA と部分的相補配列を有する mRNA の 3’非翻訳領域に結合することにより、翻訳抑制もしくは mRNA の分解を誘導することにより遺伝子発現を抑制する（メカニズムとしては様々なモデルが報告されている）。一種の miRNA は 100 以上の遺伝子を制御するとともに、全遺伝子の約 30％が miRNA の発現制御を受けると考えられている。miRNA は、既にヒトでは 1000 種以上が同定されており、細胞増殖、アポト
ーシス、免疫応答など様々な細胞活動を制御することが報告されるなど、生命活動におけるその重要性はますます大きなものとなりつつある。さらに miRNA の多くは、細胞特異的な遺伝子発現プロファイルを示す。それにより遺伝子発現を精巧に制御することで、個々の細胞特有の遺伝子発現プロファイルならびに機能・恒常性維持に寄与している。
近年、この miRNA を利用して遺伝子導入ベクターにより導入された外来遺伝子の発― 12 ―

現を制御する”Post-transcriptional De-targeting”に関する研究が活発に行われている。
その方法としては、複数コピーの miRNA 標的配列（多くの場合、miRNA の完全相補配列）を外来遺伝子の 3’非翻訳領域に挿入することにより、その miRNA が発現している細胞特異的に導入遺伝子の発現が抑制されるというものである。これによって標的細胞以外の細胞における導入遺伝子の発現を抑制することで、導入遺伝子の発現を原因とする副作用を抑制することが可能となる。我々は既に遺伝子組換え Ad を用いた癌遺伝
子治療研究において、肝細胞を含む正常細胞における導入遺伝子の発現を抑制すること
で、副作用を軽減することに成功している 2-4）。
４．マイクロ RNA を利用して Ad 遺伝子の発現を抑制可能な Ad ベクターの開発
我々は、miRNA による Post-transcriptional De-targeting を利用することで、Ad
ベクター作用後の E1 遺伝子非依存的な Ad 遺伝子の発現を抑制することを試みた 5）。
すなわち、Ad ベクター作用後、主に遺伝子発現を示した E2A、E4、pIX 遺伝子の 3’
非翻訳領域に、遺伝子工学的に miRNA 標的配列を 4 コピー挿入することにより、たとえこれらの Ad 遺伝子の転写が起こっても、miRNA が miRNA 標的配列に結合することで mRNA の分解を誘導し、発現を抑制できると考えた（図１）。Ad ベクターは全身投与後、投与量のほとんどが肝臓に集積することから肝臓特異的 miRNA である
miR-122a の標的配列、および Ad ベクターによる免疫応答に重要な役割を果たしている脾臓で特異的に高発現している miR-142-3p の標的配列を挿入することとした。
miR-122a および miR-142-3p は、Ad ベクターのパッケージング細胞（Ad ベクターを作製する細胞）である 293 細胞ではほとんど発現していない。そのため、作製した Ad
ベクターは 293 細胞を用いて従来の Ad ベクターと同程度の高タイターの Ad ベクターが回収可能であった。
次に実際に miRNA 標的配列を Ad ゲノムに挿入することで Ad 遺伝子の発現が抑制されるか検討するため、作製した Ad ベクターをマウスに尾静脈内投与し、肝臓におけるAd 遺伝子の発現量（mRNA 量）を測定した。その結果、肝臓における Ad 遺伝子の発現量は従来型 Ad ベクターである Ad-L2 と比較して、各 Ad 遺伝子の 3’非翻訳領域に
miR-122a 標的配列を挿入した Ad ベクター（Ad-E2A-122aT-L2、Ad-E4-122aT-L2、
Ad-pIX-122aT-L2）では E2A、E4、pIX の発現量がそれぞれ 5%以下に減少していた（図２）。
特に E4 遺伝子の 3’非翻訳領域に miR-122a 標的配列を有する Ad-E4-122aT-L2 では、他の Ad ベクターと比較して、E4 遺伝子だけでなく検討した全ての Ad 遺伝子の発現が大きく減少していた。E4 遺伝子産物は他の Ad 遺伝子の発現に関与するため、E4 遺伝子の発現が減少したことで他の Ad 遺伝子の発現も減少したものと考察された。以上の結果より、miRNA による Post-transcriptional De-targeting により各 Ad 遺伝子の発現を抑制可能であることが示された。

― 13 ―

さらに、肝臓での Ad 遺伝子の発現を抑制することで肝障害を軽減可能か検討した。
肝障害は、Ad ベクターによる主要な副作用の一つである。Ad ベクターをマウスに尾静脈内投与後、肝障害の指標である血清中 alanine aminotransferase (ALT) 値を経時的に測定したところ、すべての Ad ベクター投与群において、投与 10 日後をピークに血清中
ALT 値が上昇した（図 3）。しかしながら、Ad-E4-122aT-L2 投与群では血清中 ALT 値がAd-L2 と比較して 1/2 以下に減少しており、開発した Ad ベクターの中で最も肝障害が低かった。さらに組織切片を作製し組織学的に肝障害を評価したところ、Ad-L2 投与群
では肝細胞の細胞質に強い空胞化および細胞死が観察されたが、Ad-E4-122aT-L2 投与
群ではそのような空胞化が見られず、肝障害が大きく軽減していた。これらの結果より、
E4 遺伝子の 3’非翻訳領域に miR-122a 標的配列を挿入した Ad ベクター
（Ad-E4-122aT）
は従来型 Ad ベクターと比較して肝障害性が低く安全性が高いこと、そして肝臓での E4遺伝子の発現を抑制することが Ad ベクターによる肝障害の抑制に重要であることが示された。
さらに Ad-E4-122aT が従来型 Ad ベクターよりも肝障害性が低いメカニズムの解明を試みた。Ad ベクターによる肝障害には、Ad タンパク質に対する細胞性免疫応答が大きく関与することから、Ad タンパク質に対する細胞性免疫に着目し検討を進めた。まず、脾臓における Ad 特異的な細胞傷害性 T 細胞数および肝臓に浸潤した CD8 陽性 T 細胞数を検討したところ、Ad-L2 と Ad-E4-122aT-L2 との間に有意な差は認められなかった。
そこで、Ad-E4-122aT-L2 投与群では肝細胞における Ad タンパク質の発現が抑制されるために Ad タンパク質の抗原提示が低下しているのではないかと考え、Ad-L2 もしくはAd-E4-122aT-L2 を作用させたマウス初代肝細胞を、脾臓より回収した細胞傷害性 T 細胞と共培養し、その細胞障害レベルを評価した。その結果、Ad-E4-122aT-L2 作用群における細胞障害レベルは、従来型 Ad ベクターより有意に低いものであった。したがって、Ad-E4-122aT 投与群では、肝細胞での Ad 遺伝子の発現量が低いために、その抗原提示量が低く、細胞障害性 T 細胞による攻撃を受けにくいことが示唆された。また、
Ad タンパク質はそれ自身が獲得免疫非依存的に細胞障害を誘導することが報告されている。そこで Ad タンパク質による獲得免疫非依存的な肝障害性について検討するため、
T 細胞および NK 細胞が欠損している免疫不全マウスである Rag2/Il2rc 欠損マウスにAd ベクターを投与したところ、Ad-L2 投与群では血清中 ALT 値が有意に上昇した。一方で、Ad-E4-122aT-L2 投与群では全く上昇しなかった。以上の結果より、Ad-E4-122aT
では、獲得免疫非依存的な経路による肝障害も軽減されることが明らかとなった。
次に、レポーター遺伝子として murine secreted embryonic alkaline phosphatase（mSEAP）
遺伝子を搭載した Ad ベクターを作製し、肝障害の軽減により導入遺伝子の発現プロフ
ァイルが改善するか検討した。従来型 Ad ベクター（Ad-AHASEAP）と、最も肝障害性が低い Ad-E4-122aT（Ad-E4-122aT-AHASEAP）をマウスに静脈内投与し、血中 mSEAP
量を測定したところ、従来型 Ad ベクターである Ad-AHASEAP 投与群では血中 mSEAP― 14 ―

量 が 投 与 10 日 後 を ピ ー ク に 徐 々 に 低 下 し て い っ た （ 図 4 ）。 一 方 で 、
Ad-E4-122aT-AHASEAP 投与群では投与半年後に至ってもなお高い血中 mSEAP 量を維持しており、その発現量は従来型 Ad ベクターと比較して約 30 倍高いものであった。
以上の結果より、mR-122a 標的配列を E4 遺伝子の 3’非翻訳領域に挿入した Ad-E4-122aT
は、高い安全性と遺伝子導入活性を兼ね備えた次世代型ベクターであることが示された。
５．今後の展望Ad ベクターは、近年では癌治療用ベクターもしくはワクチンベクターとしての応用に関して盛んに研究が進められているが、上述のように安全性を高めることによって全身投与による先天性遺伝子欠損による疾患にも応用可能になると思われる。先天性遺伝
子欠損症では新生児期および幼少期における治療が必要な場合があるが、Ad-E4-122aT
は新生仔マウスにおいても高い遺伝子発現を示すことを、我々は最近明らかにしている。
また Ad-E4-122aT は肝臓における遺伝子機能解析等にも極めて有用なツールになるものと期待される。
６．謝辞
本研究は、水口裕之教授が主宰する大阪大学大学院薬学研究科分子生物学分野において行われたものであり、水口裕之教授をはじめ、本研究にご協力いただいた多くの先生
方、学生に深く御礼申し上げます。特に in vivo における Ad ベクターの機能解析に関しては清水かほり先生（当時、大学院生、現・大阪大谷大学助教）、組織切片の解析においては中村紳一朗先生（滋賀医科大学准教授）に多大なご協力を賜りました。この場を借りて御礼申し上げます。
７．参考文献１） Shimizu K., Sakurai F., et al., Molecular Pharmaceutics, 8; 1430-1435. (2011)２） Suzuki T., Sakurai F., et al., Molecular Therapy, 16; 1719-1726. (2008)
３） Sugio K., Sakurai F., et al., Clinical Cancer Research, 17; 2807-2818. (2011)
４） Bennett D., Sakurai F., et al., Molecular Pharmaceutics, 9; 3452-3463. (2012)５） Shimizu K., Sakurai F., et al., Molecular Therapy Methods and ClinicalDevelopment, 1; 14035. (2014)― 15 ―

miRNA標的配列 (4コピー)
pA

GOI

E1(-)

E3(-)

Ad遺伝⼦

Adベクターゲノム
Transcription
RISC
Ad遺伝⼦

m7GpppAAAA
miRNA

Ad遺伝⼦mRNAの分解・翻訳抑制

図１．miRNA 標的配列を Ad 遺伝子の 3’非翻訳領域に挿入した Ad ベクター．
Ad ベクター作用後、遺伝子発現を示した E2A、E4、pIX 遺伝子の 3’非翻訳領域に肝臓特異的 miRNA である miR-122a、もしくは脾臓特異的 miRNA である miR-142-3p の標的配列 4 コピーを遺伝子工学的に挿入した。これにより、Ad ベクター作用後、Ad遺伝子の転写が起こっても、miRNA 標的配列に miRNA が結合することで翻訳が抑制され、Ad 遺伝子の発現が抑制される。

100
E2a
E4
pIX
Hexon
Penton base
Fiber
Luc

10-1
10-2
10-3
10-4

Ad-L2

Ad-E2A122aT-L2

Ad-E4122aT-L2

Ad-pIX122aT-L2

Ad-E2A142-3pT-L2

Ad-E4142-3pT-L2

Ad-pIX142-3pT
-L2

N.D.

N.D.
N.D.

10-6

N.D.

10-5
N.D.

Ad遺伝⼦ mRNA量 (Ad gene/GAPDH)

101

Background
Level

PBS

図２．各種 Ad ベクター投与後の肝臓における Ad 遺伝子の発現量．
マウスに各種 Ad ベクターを投与し、48 時間後肝臓を回収した。その後、定量的 RT-PCR
により各種 Ad 遺伝子 mRNA 量を定量した。
（文献５）より引用、改変）― 16 ―

Ad-L2
Ad-E2A-122aT-L2

ALT

300

Ad-E4-122aT-L2
Ad-pIX-122aT-L2

ALT (IU/L)

250

Ad-E2A-142-3pT-L2

200

Ad-E4-142-3pT-L2
Ad-pIX-142-3pT-L2

150

PBS

100
50
0

0

2

4
6
8
10
12
Days after administration

14

図３．各種 Ad ベクター投与後の血清中 ALT 値．
作製した各種 Ad ベクターをマウスに尾静脈内投与した。その後経日的に採血し、血清

⾎中mSEAP濃度 (g/mL)

中 ALT 値を測定した。
（文献５）より引用）

* * *

50000

*

*

*

*

Ad-AHASEAP

*

5000

*

Ad-E4-122aT-AHASEAP

*

*

500

50
0

20

40

60
80
100
120
Days after administration

140

160

図４．Ad-E4-122aT による長期にわたる遺伝子発現．
mSEAP を発現する従来型 Ad ベクター（Ad-AHASEAP）および miR-122a 標的配列を E4 遺伝子の 3’非翻訳領域に挿入した Ad ベクター（Ad-E4-122aT-AHASEAP）をマ
ウスに尾静脈内投与した。Ad ベクター投与後、経日的に採血し血中 mSEAP 量を測定した。（参考文献５）より引用、改変）― 17 ―

― 18 ―

第 124 回関西実験動物研究会
平成 26 年 12 月 5 日（金）10:00 〜17:00

京都大学 楽友会館

1． ENU ミュータジェネシスにより得られた歩行異常ラットの遺伝学的ならびに病理学的解析○由利 梓 1、田中大資 1、芹川忠夫 1, 2、田中美有 3、桑村 充 3、庫本高志 1 （1 京大院・医・動物実験施設、2 大阪薬大、3 大阪府大・獣医病理）
2． VF ラットにおけるオリゴデンドロサイトの分化・成熟異常○田中美有 1、井澤武史 1、山手丈至 1、Robin J.M. Franklin2、庫本高志 3、芹川忠夫 4、桑村 充 1 （1
大阪府大・獣医病理、2 Wellcome Trust-MRC Cambridge Stem Cell Institute, University of Cambridge、
3 京大院・医・動物実験施設、4 京大院・医 /大阪薬大）
3． 新たなアトピー性皮膚炎ラットモデルの開発
樋口裕城 1、横江繭子 1、由利 梓 1、田中大資 1、日合 弘 2、芹川忠夫 2,3、○庫本高志 1（1 京大院・医・動物実験施設、2 京大・医、3 大阪薬大）4． 新規肥満・糖尿病モデル ZFDM ラットの表現型解析○横井伯英 1、グプルジャン ゲニ 1、別府正悠 1、山口拓郎 1、日高志保美 1、川畑綾子 1、星野貴一 2、
星野雅行 2、清野 進 1 （1 神戸大院・医・分子代謝医学、2 星野試験動物飼育所）
5． 免疫不全（X-scid）ラットにおける縮小条虫の動態○大野民夫１、石井 明２、甲斐巧也１、前川智樹１、記野秀人２（１名大院・医・実験動物、
２浜松医大・感染症学）
6． ラット胚の凍結保存および融解後の産子への発生について○竹鶴 裕亮、金子 武人 （京大院・医・動物実験施設）
7． CRISPR/Cas9 system で作製した ApoE KO マウスの表現型解析○田中貴雄 1、大口悦宏 2、島田俊雄 2、中里清一 2、三浦義記 1, 2、金智蓮 3、中井綾 3、
井戸基治 1, 2 （1 株式会社ケー・エー・シー GE 動物事業室、2 株式会社ケー・エー・シー
バイオサイエンス事業部、3 株式会社アプロサイエンス バイオ事業部）
8． マウス系統間のストレプトゾトシン誘発糖尿病感受性の遺伝的解析◯前川智樹 1、小林美里 2、伊藤美佳子 3、大野欽司 3、馬場谷成 4、上田裕紀 5、池上博司 4、堀尾文彦 2、高橋雅英 6、大野民生 1 (1 名大院・医・実験動物、2 名大院・生命農・動物栄養、3 名大院・医・
神経遺伝情報、4 近畿大・医・内分泌代謝糖尿病内科、5 阪大院・医・分子内分泌、6 名大院・医・腫瘍病理)
9． 系統差による癌型 K-Ras 依存的な肺発癌感受性遺伝子座の探索○齋藤浩充、鈴木昇（三重大・生命科学研究支援センター・動物機能ゲノミクス）
10． 遺伝子改変動物モデルから探る多形型横紋筋肉腫のオリジン○鈴木昇、斉藤浩充（三重大・生命科学研究支援センター・動物機能ゲノミクス）― 19 ―

11． てんかん～うつ・不安障害の発症に関わるシアル酸転移酵素について○加藤啓子、パイトゥーン シーモントリー（京都産大・総合・動物生命）
12． 行動量や探索行動に影響する成長ホルモンの Arc 発現量の調節（英語で発表）○パイトゥーン シーモントリー、 廣田暖奈、加藤啓子（京都産大・総合・動物生命）
13． 冠動脈病変が冠スパズムおよび狭心症発症に及ぼす影響、WHHLMI ウサギを用いた実験的検証○田村姿央理１、小池智也２、ユウイン２、塩見雅志１，２（１神戸大院・医・疾患モデル動物病態生理学、２附属動物実験施設）
14． CAR バチルスに学名をつけるぞ◯池 郁生 1、坂本光央 1、小久保年章 2 （1 理研バイオリソースセンター、2 放医研基盤技術センター）― 20 ―

― 21 ―

― 22 ―

― 23 ―

― 24 ―

― 25 ―

― 26 ―

― 27 ―

― 28 ―

― 29 ―

― 30 ―

― 31 ―

― 32 ―

― 33 ―

― 34 ―

＜第125回研究会（平成27年３月６日＞
テーマ：関西実験動物研究会へようこそ
１．幹細胞の多能性維持と分化の分子機構研究
依馬 正次（滋賀医科大学 動物生命科学研究センター 幹細胞・ヒト疾
患モデル研究分野、科学技術振興機構 さきがけ）
２．糖鎖はさまざまな生命現象の鍵となっている
浅野 雅秀（京都大学大学院 医学研究科附属動物実験施設）

幹細胞の多能性維持と分化の分子機構研究
依馬正次
滋賀医科大学、動物生命科学研究センター、幹細胞・ヒト疾患モデル研究分野

胚性幹（ES）細胞は、胚盤胞期の内部細胞塊から単離される多能性幹細胞であるが、発生過程においてどのような分子機構で多能性が獲得されるのか不明な点が多い。我々がKlf (Kruppel-like factor) family memberの一つであるKlf5
についてノックアウトES細胞を作製したところ、ノックアウトES細胞は顕著な増殖低下傾向を呈した（図１参照）1)。さらにノックアウトマウスは胚盤胞期に胚致死となることを見出した1)。表現型を解析する過程で、多能性マーカーであるNanogを発現する段階前に細胞周期異常が起こることを見出した。このような表現型を引き起こす分子機構はこれまで不明であったが、Fgf-FgfR- MAPK
経路が過剰に活性化されていることを示唆する遺伝子発現変化が起きていた。
このシグナル経路を遮断する化合物の添加により、初期胚の表現型がほぼレスキューできることから、Klf5は初期胚においてFgf経路を抑制することで多能性獲得を保証する鍵分子として機能することを明らかにしたと考えられる（浅見ら、未発表）。
一方、我々はマウスES細胞を用いた循環器系細胞への分化研究から、血管の発生機構に興味を持ち研究を行っている2) 3)。血管新生の分子メカニズムを包括的に理解することを目標として、血管内皮細胞のトランスクリプトームを把握することを試みたところ、遺伝子名は既知であるものの血管内皮細胞においての機能については未知である遺伝子、また遺伝子名すら付与されていない未知遺伝子群を多く含んでいた。パイロット的にヒト培養血管内皮細胞におけるノックダウンを行ったところ、VEGF依存性の菅腔形成を顕著に阻害する遺伝子を見出した。３遺伝子についてノックアウトマウスを作製し、２遺伝子について
網膜血管新生の安定化に寄与することを見出した（図２）4)。以上の事から、我々の手法により、個体レベルで血管新生に寄与し得る遺伝子が探索可能であることが示された。同定された遺伝子には、ヒト腫瘍においても高発現しているものが含まれており、生理的血管新生のみならず腫瘍血管新生に寄与するかどうか今後の課題である。

― 35 ―

1.

Ema et al., Krüppel-like factor 5 is essential for blastocyst development

and the normal self-renewal of mouse ES cells. Cell Stem Cell 3, 555-567 (2008)2.

Ema et al., Combinatorial effects of Flk1 and Tal1 on vascular andhematopoietic development in the mouse. Genes Dev. 17:380-393 (2003)
3.

Ishitobi

etal.,Molecular

basis

for

Flk1

expression

inhemato-cardiovascular progenitors in the mouse. Development 138, 5357-5368(2011)
4.

Takase et al., Genome-wide identification of endothelial cell-enrichedgenes in the mouse embryo. Blood 120:914-923. (2012)― 36 ―

― 37 ―

糖鎖は様々な生命現象の鍵となっている
浅野

雅秀

京都大学医学研究科附属動物実験施設

糖鎖は核酸やタンパク質と同様に生体情報を担う分子であり，第３の生命鎖と呼ばれている。分子と分子あるいは細胞と細胞の相互作用に関わっており，生命現象の様々な局面に登場すると共に，その異常はいくつかの疾患を引き起こすことが知られている。
β1→4 結合にガラクトースを転移する酵素は７つの遺伝子（β4GalT-1〜-7）が存在し，それぞれに役割分担があると思われる。我々の研究室ではこれまで β4GalT-1，-2，-5 の欠損マウスを作出して解析を行ってきた。β4GalT-1 は神経系以外でユビキタスに最も強く発現しており，我々が最初にそのノックアウトマウスを作製したところ，上皮系細胞の増殖と分化に異常が観察された。また，血清糖タンパク質の糖鎖構造を β1→4Gal を認識する RCA-1 レクチンと末端の N-アセチルグルコサミン（GlcNAc）を認識する PVL
レクチンを用いて調べたところ，ほとんどのタンパク質においてガラクトースが欠損して GlcNAc が露出していたが，一部のタンパク質ではガラクトースが残存しており，他にも β4GalT が存在する可能性が示唆された 1)。その後，β4GalT-1 は免疫系では白血球の細胞接着に関与するセレクチンのリガンド糖鎖の生合成に重要な役割を果たしていることがわかった。セレクチンのリガンド糖鎖は O 型糖鎖のコア２側鎖の末端に形成されるシアリルルイス X（sLex）がその代表的なものであるが，このマウスの脾臓白血球のコア２側鎖の構造を HPLC で解析したところ，そのほとんどにガラクトースが欠損しており，sLex が形成されていないことがわかった。そのため，このマウスでは炎症時の好中球やマクロファージの遊走が低下して皮膚の炎症反応が減弱していた 2)。また，皮膚の創傷時の好中球やマクロファージの浸潤も低下しており，創傷治癒が遅延することもわかった 3)。
さらに，β4GalT-1 欠損マウスは腎臓にも異常を生じて短命であった。このマウスは若齢より顕著なアルブミン尿が検出され，一部に血尿も観察された。組織学的解析からは，腎糸球体のメサンギウム基質の顕著な増生（PAS 染色）と IgA や補体 C3 のメサンギウ
ム領域への沈着（蛍光免疫染色），パラメサンギウム領域への免疫複合体の沈着（電顕）が観察され，IgA 腎症を自然発症することがわかった。IgA 腎症患者と同様に，血中のIgA 濃度が顕著に高く，IgA が多量体を形成していた。患者では IgA 分子の O 型糖鎖のガラクトース欠損が報告されている。
マウスの IgA 分子には O 型糖鎖は結合しないが，このマウスでは IgA の N 型糖鎖のガラクトースが完全に欠落しており，患者と同様に― 38 ―

IgA 分子の糖鎖不全が IgA 腎症を引き起こしたのではないかと考えられた 4)。
一方，脳神経系で発現している β4GalT-2 の欠損マウスには外見上の異常が見られなかったので，テストバッテリー方式の行動解析を行なった。その結果，空間学習・記憶と協調運動に障害が見られ，脳神経系での機能的な糖鎖として知られている HNK-1 糖鎖の発現が大脳皮質や海馬で顕著に減少していた 5)。以前に HNK-1 糖鎖の合成を担う
グルクロン酸合成酵素（GlcAT-P）の欠損マウスを京大薬学部の川㟢先生や岡先生との共同研究で作製したが，GlcAT-P 欠損マウスも空間学習・記憶と海馬の神経可塑性に障害があったので 6)，β4GalT-2 欠損マウスの空間学習・記憶障害は，HNK-1 糖鎖の発現低下が原因と考えられた。逆に，β4GalT-2 は HNK-1 糖鎖の形成に必須であり，脳神経系の機能に関与することがわかった。一方，GlcAT-P 欠損マウスは協調運動には問題がなかったので，β4GalT-2 欠損マウスの協調運動障害は HNK-1 糖鎖とは別の糖鎖構造の欠損に原因があると思われた。小脳の組織学的解析から，プルキンエ細胞の数と配列に異常が観察され，β4GalT-2 はプルキンエ細胞の形成に重要であることが示唆された。
β4GalT-5 も脳神経系で強い発現が見られたが，β4GalT-5 欠損マウスは予想に反して胎生期（E10.5 あたり）に致死となった。E7.5〜E9.5 の胚の解析を行ったところ，三胚葉のマーカーは正常に発現しており，胚よりは胚体外組織に異常が見られた。そこで，テ
トラプロイドレスキュー実験を行ったところ，野生型のテトラプロイド（４倍体）胚と２倍体の β4GalT-5 欠損胚とのキメラ胚は，少なくとも E12.5 までは正常に発生してレスキューされた。テトラプロイド胚は胚体外組織にしか分化できないので，胚体外組織は野生型，胚は β4GalT-5 欠損となっている上記のキメラ胚が正常に発生した場合は，胎生致死の原因は胚体外組織にあると言える。したがって，β4GalT-5 欠損胚は，胚自身よりも胚体外組織の異常で致死となることがわかった。タンパク質にガラクトースを転移する最も主要な β4GalT-1 の欠損マウスも胎生致死にはならなかったので，β4GalT-5はタンパク質糖鎖ではなく，スフィンゴ糖脂質の合成起点となるラクトシルセラミド（LacCer）の合成を担う可能性が考えられた。LacCer 合成酵素はラットの脳ではβ4GalT-6 が担うことがすでに報告されているが，β4GalT-5 は β4GalT-6 と最も相同性が高いので，β4GalT-5 欠損胚での LacCer 合成酵素活性を測定したところ，野生型の 10％程度に激減していた。以上のことからマウスの胚では β4GalT-5 が主要な LacCer 合成酵素であり，β4GalT-5 欠損胚は LacCer とその下流のガングリオシドの合成がほとんど消失するために，胎生致死となることがわかった 7)。なお，β4GalT-6 欠損マウス（正常に発生する）を名大の古川先生から分与していただき，我々の脳神経特異的 β4GalT-5 欠
損マウスと交配して，脳神経系における β4GalT-5 と β4GalT-6 の機能について研究を進めている。

― 39 ―

以上のように同じファミリーに属するガラクトース転移酵素でも，それぞれ免疫系，脳神経系，発生過程と役割分担があり，生体にとって重要な役割を担っていることがわ
かってきた 8)。
昨年 12 月から京都大学に研究の場を移し，これまでの糖鎖研究をさらに発展させると共に，ヒストン修飾に注目したエピジェネティクス研究も進めるつもりである。どちらも翻訳後に修飾されるものであり，前者はグライココード，後者はヒストンコードとして，重要な機能を果たしており，この２つのコードの解読を進めていく予定である。
今後とも関西実験動物研究会の皆様のご指導・ご鞭撻をよろしくお願い致します。

参考文献
1) Asano, M., Furukawa, K., Kido, M., Matsumoto, S., Umesaki, Y., Kochibe, N. andIwakura,Y. Growth retardation and early death of -1,4-galactosyltransferase knockout micewith augmented proliferation and abnormal differentiation of epithelial cells. EMBO J. 16:
1850-1857, 1997.
2) Asano, M., Nakae, S., Kotani, N., Shirafuji, N., Nambu, A., Hashimoto, N., Kawashima, H.,
Hirose, M., Miyasaka, M., Takasaki, S., and Iwakura, Y. Impaired selectin ligand
biosynthesis and reduced inflammatory responses in -1,4-galactosyltransferase-I-deficientmice. Blood 102: 1678-1685, 2003.
3) Mori, R., Kondo, T., Nishie, T., Oshima, T., and Asano, M. Impairment of skin woundhealing in -1,4-galactosyltransferase-deficient mice with reduced leukocyte recruitment.
Am. J. Pathol. 164: 1303-1314, 2004.
4) Nishie, T., Miyaishi, O., Azuma, H., Kameyama, A., Naruse, C., Hashimoto, N., Yokoyama,
H., Narimatsu, H., Wada, T., and Asano, M. Development of immunoglobulin A
nephropathy-like disease in -1,4-galactosyltransferase-I deficient mice. Am. J. Pathol. 170:
447-459, 2007.
5) Yoshihara, T., Sugihara, K., Kizuka, Y., Oka, S., and Asano, M. Learning/memory
impairment

andreducedexpression

of

the

HNK-1

carbohydratein4-galactosyltransferase-II-deficient mice. J. Biol. Chem. 284: 12550-12561, 2009.
6) Yamamoto, S., Oka, S., Inoue, M., Shimuta, M., Manabe, T., Takahashi, H., Miyamoto, M.,
Asano, M., Sakagami, J., Sudo, K., Iwakura, Y., Ono, K., and Kawasaki, T. Mice deficientin nervous system-specific carbohydrate epitope HNK-1 exhibit impaired synaptic plasticity
and spatial learning. J. Biol. Chem. 277: 27227-27231, 2002.
7) Nishie, T., Hikimochi, Y., Zama, K., Fukusumi, Y., Ito, M., Yokoyama, H., Naruse, C., Ito,

― 40 ―

M. and Asano, M. 4-Galactosyltransferase-5 is a lactosylceramide synthase essential formouse extra-embryonic development. Glycobiology 20: 1311-1322, 2010.
8) 浅野雅秀

総説「ガラクトース糖鎖と炎症，発生，神経」生化学 86: 382-390, 2014.

― 41 ―

＜第126回研究会（平成27年６月12日＞
テーマ：エピジェネティクス研究の最前線
１．膵β細胞機能のエピゲノム制御
木戸 良明（神戸大学大学院 保健学研究科病態解析学領域 分析医科学分野）
２．発生・分化におけるエピジェネティクス
仲野 徹（大阪大学大学院 生命機能研究科・時空生物学／医学系研究科・
病理学）＜トピックス＞
創薬の隘路「Phase 2 Attrition」の克服に向けて－実験動物学の進展への期待榑林 陽一（日本医療研究開発機構 創薬支援戦略部）

― 43 ―

発生・分化におけるエピジェネティクス
大阪大学大学院・生命機能研究科・仲野 徹＜はじめに＞
エピジェネティクスとは、ヒストン修飾と DNA メチル化による遺伝子発現制御機構である。すべての生命現象に関わっているともいえるエピジェネテ
ィクスであるが、多細胞体の発生・分化においても極めて重要な役割を果たしている。なかでも、受精後すぐの初期発生、および、生殖細胞の発生においては、ゲノム全体における DNA の脱メチル化から de novo DNA メチル化が生じるという、非常にダイナミックなプロセスをとる。我々の研究室では、初期胚における DNA 脱メチル化の制御機構、および、胎生期雄性生殖細胞におけるレトロトランスポゾン遺伝子の de novo DNA メチル化についての研究をおこなってきた。
＜Stella と初期胚の DNA 脱メチル化＞
Stella は、未分化な生殖細胞である始原生殖細胞、卵細胞、および初期胚において発現するタンパクである。Stella 遺伝子破壊マウスは、メスのみが不妊になる。その異常が生じるタイミングを詳細に解析すると、受精直後において機能することが明らかになった。
受精後すぐにゲノム全体に DNA 脱メチル化が生じるが、父親に由来す
る雄性ゲノムと母親に由来する雌性ゲノムでは、
そのタイミングに違いが
図１：エピジェネティック不均等性と Stella の機能ある。雄性ゲノムは DNA

複製が開始される前に能動的な DNA 脱メチル化が生じるのに対して、雌性ゲ
ノムは DNA 複製に依存した受動的なメカニズムによって脱メチルが生じる。
そして、この違いはエピジェネティック不均等性と呼ばれている。

― 44 ―Stella を欠損する初期胚では、エピジェネティック不均等性が崩れて、雌性ゲノムも能動的 DNA 脱メチル化機構によって脱メチル化を受けることが明らかになった。また、同じく Stella 欠損胚では、維持されるはずの、インプリンティング遺伝子や IAP レトロトランスポゾン遺伝子の DNA メチル化も消失することが明らかになった。これらのことから、Stella は初期胚において DNA メチル化を保護する機能を有することがわかった 1（図１）。
精子と卵子の形成過程の違いから、初期胚において、雄性
クロマチンと雌性クロマチンで、一部のヒストン修飾が異なっている。抑制的なヒストン修飾である
H3K9me2（ヒスト

図２：H3K9me2 を介した Stella による DNA メチル化保護の分子機構

ン H3 の 9 番目のリジンのジメチル化）もそのひとつであり、雌性クロマチンにおいてのみ認められる。種々の解析から、Stella は H3K9me2 を含むクロマチンに結合して、能動的 DNA 脱メチル化から DNA メチル化を保護する。
機能を発揮することを明らかにした 2（図２）＜胎生期雄性生殖細胞における de novo DNA メチル化と piRNA＞
piRNA（Piwi interactingRNA）は生殖細胞特異的に発現する非コード小分子 RNA であり、胎生期の雄性生殖細胞における piRNA は、その大部分がレトロトランスポゾンの塩基配列に対応するものであることがわかっている。そして、その段
図３：piRNA 生成における MILI と MIWI2 の機能― 45 ―

階における piRNA の産生には、三つあるマウス PIWI ファミリータンパクのうち MILI と MIWI2 が関与している（図３）。我々は、MILI と MIWI2 の機能を中心に、piRNA の分子機能についての解析をおこなってきた。
MILI あるいは MIWI2 を欠損するマウスでは、パキテン期において生殖細胞がアポトーシスで死滅するため不妊になる 3。また、これらのマウスでは、
IAP や Line-1 といったレトロトランスポゾンの発現が更新すること、その発現更新はレトロトランスポゾン遺伝子の制御領域の DNA メチル化低下によること、そして、その DNA メチル化の低下は de novo DNA メチル化の異常によること、などを明らかにした 4。
我々や他の研究グループの結果から、胎生期の雄性生殖細胞においては、
piRNA 依存的にレトロトランスポゾン遺伝子に DNA メチル化が生じ、その結果、発現が抑制されると考えられている。また、図３にあるように、piRNAの産生には、センス鎖とアンチセンス鎖の RNA が必要であることもわかっている。これらの成果から、レトロトランスポゾン以外の遺伝子であっても、胎生期の雄性生殖細胞においてセンス鎖とアンチセンス鎖が存在していれば、
piRNA 依存的な DNA メチル化を誘導できるのではないかと考え、トランス
ジェニックマウスを利用した実験をおこなった。
その結果、EGFP トラン
スジーンを用いたモデル実
験においても、胎生期雄性生殖細胞において発現し、de novo DNA メチル化に関与する内在性の遺伝子である DNMT3L においても、
図４：piRNA 生成における MILI と MIWI2 の機能

piRNA の産生および、それに依存する遺伝子発現の抑制を誘導することができた（図４｝5。この方法論は、いま話題の、世代を超えたエピジェネティック遺伝の解析に利用できるのではないかと期待し、実験を続けている。

― 46 ―

＜おわりに＞DNA メチル化は多くの生命現象において極めて重要であり、その制御機構
は非常に複雑である。ここに紹介した、初期胚と生殖細胞における DNA メチ
ル化のダイナミクスだけでも、まだまだわからないことが多く残されている。

＜参考文献＞
1. Nakamura T, Arai Y, Umehara H, Masuhara M, Kimura T, Taniguchi H, Sekimoto T, Ikawa
M, Yoneda Y, Okabe M, Tanaka S, Shiota K, Nakano T
PGC7/Stella protects against DNA demethylation in early embryogenesis
Nature Cell Biol, 9: 64-71, 2007
2. Nakamura T, Liu YU, Nakashima H, Umehara H, Inoue K, Matoba S, Tachibana M, Ogura
A, Shinkai Y, Nakano T. .
PGC7 binds histone H3K9me2 to protect against conversion of 5MeC to 5HmC in early
embryos
Nature, 486: 415-9, 2012
3. Kuramochi-Miyagawa K, Kimura T, Ijiri T, Asada N, Fujita Y, Ikawa M, Isobe T, Iwai N,
Okabe M, Deng W, Lin H, Matsuda Y, Nakano T
mili, a mammalian member of piwi family gene, is essential for spermatogenesis
Development, 131:839-849, 2004
4. Kuramochi-Miyagawa S, Watanabe T, Gotoh K, Totoki Y, Toyoda A, Ikawa M, Asada N,
Kojima K, Yamaguchi Y, Ijiri T, Hata K, Li E, Matsuda Y, Kimura T, Okabe M, Sakaki Y,
Sasaki H, Nakano T
DNA methylation of retrotransposon genes is regulated by Piwi family members MILI andMIWI2 in murine fetal testes.
Genes Dev, 22:918-30, 2008
5. Itou D, Shiromoto Y, Shin-ya Y, Ishii C, Nishimura T, Ogonuki N, Ogura A,
KUramochi-Miyagawa, Nakano T.
Induction of DNA methylation by artificial piRNA production in male germ cells.
Current Biol, 25: 901-906, 2015

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― 48 ―

関西実験動物研究会だより

＜その他＞

関西実験動物研究会だより
関西実験動物研究会会報第 36 号に掲載した第 122 回研究会以降、以下の研究会が開催された。
１）第 123 回研究会（平成 26 年 9 月 27 日（土）、大阪大学 銀杏会館）＜講演会＞ テーマ：循環器研究の新たな展開
１．ゼブラフィッシュを用いた心臓・血管形成のイメージングによる研究
望月 直樹（国立循環器病研究センター研究所 細胞生物学部）
２．SPring-8 放射光を用いた小動物心血管機能の in vivo イメージング
白井 幹康（国立循環器病研究センター研究所 心臓生理機能部）＜トピックス＞
名古屋議定書についての詳細説明
中川原 秀樹（文部科学省 研究振興局 ライフサイエンス課）
鈴木 睦昭（国立遺伝学研究所 知的財産室 ABS 学術対策チーム）＜維持会員ニュース＞
１．PCR を活用した微生物モニタリングの提案
日本チャールス・リバー株式会社
２．新しい洗浄器の提案 “減圧沸騰式洗浄器 RQ 型”
三浦工業株式会社
２）第 124 回研究会（平成 26 年 12 月 5 日（金）、京都大学 楽友会館）＜特別講演＞
１．非コードRNAによる遺伝子発現制御機構を利用した遺伝子組換えアデノウイルスの開発
櫻井 文教 （大阪大学大学院薬学研究科 分子生物学分野）
２．サルレトロウイルスによるニホンザル血小板減少症
岡本 宗裕（京都大学霊長類研究所 人類進化モデル研究センター）＜会員の発表＞ 14 題
３）第 125 回研究会（平成 27 年 3 月 6 日（金）、京都大学 楽友会館）＜講演会＞ テーマ：関西実験動物研究会へようこそ
１．幹細胞の多能性維持と分化のメカニズム
依馬 正次（滋賀医科大学 動物生命科学研究センター 幹細胞・ヒト疾患モデル研究分野、
科学技術振興機構・さきがけ）
２．糖鎖は様々な生命現象の鍵となっている
浅野 雅秀（京都大学大学院医学研究科 附属動物実験施設）＜維持会員ニュース＞
実験動物としての豚の位置付けおよびハンドリング（ゲッチンゲンミニブタ）
オリエンタル酵母工業株式会社 伊那 MP 生産センター（林 直木）― 49 ―

４）第 126 回研究会（平成 27 年 6 月 12 日（金）、神戸大学医学部会館 シスメックスホール）＜講演会＞ テーマ：エピジェネティクス研究の最前線
１．膵β細胞機能のエピゲノム制御
木戸 良明（神戸大学大学院保健学研究科 病態解析学領域 分析医科学分野）
２．発生分化におけるエピジェネティック制御
仲野 徹（大阪大学大学院 生命機能研究科・時空生物学／医学系研究科・病理学
科学技術振興機構・CREST）＜トピックス＞
創薬の隘路「Phase 2 Attrition」の克服に向けて－実験動物学の進展への期待榑林 陽一（国立研究開発法人 日本医療研究開発機構）＜維持会員ニュース＞
行動実験用の防音シールド室について
小原医科産業株式会社（小原 喜一）≪幹事会、評議員会、総会の議事概要≫

幹事会の概要日時：平成 27 年 2 月 9 日（水）、午後 3 時～5 時
場所：京都府立医科大学 基礎 3 階会議室
出席者：喜多、桑村、庫本、横井、岡田、久保、近藤、佐加良、塩谷、田島、中井、中村、松田、山本
欠席者：宮嶋、伊川、池田、黒澤、塩見、坪田、真下、山添
議事：
１．平成 26 年度事業報告及び決算報告・平成 26 年度の事業報告及び決算報告について確認した。参加費（非会員）の費目を会費とは別建てにすること、収支決算書と繰越決算書の整合性を確認することとした。
２．第 11 期（平成 26～28 年度）評議員及び幹事の異動
・喜多会長より、黒澤幹事が平成 26 年度をもって幹事および評議員を辞退すること、浅野雅秀氏（京都大学大学院医学研究科附属動物実験施設）が平成 27 年度から評議員および幹事となることについて説明があった。
・喜多会長より、前会長の芹川忠夫氏が名誉会員に推薦され、全会一致で承認された。
３．平成 27 年度事業計画（案）・平成 27 年度の事業計画（案）について確認した。第 128 回および第 129 回の日程について確認することとした。

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４．平成 27 年度予算（案）・平成 27 年度の予算（案）について確認した。参加費（非会員）の費目を会費とは別建てにすること、機関誌発行経費の費目および予算の修正を行うこととした。
５．メーリングリスト利用に関する申し合わせ
・メーリングリスト利用に関する申し合わせついて確認した。第 33 回評議員会および第 32 回
総会にて説明することとした。
６．その他
・日本生化学会近畿支部例会の協賛について、喜多会長より説明があり、全会一致で承認された。
・研究会会報別刷について、必要性を協議した結果、廃止することとした。
・会費未納入者について、事務局から督促を行うとともに関係者からの依頼をお願いすることとした。
日時：平成 27 年 11 月 6 日（金）、午後 3 時～5 時
場所：京都府立医科大学実験動物センター 会議室
出席者：喜多、桑村、庫本、横井、浅野、近藤、田島、坪田、中井、真下、山添、山本
欠席者：宮嶋、伊川、池田、岡田、佐加良、久保、塩見、塩谷、中村、松田
議事：
１．第 128 回研究会（平成 27 年 12 月 4 日）について
・一般演題 10 題と特別講演 2 題の時間割および座長を決定した。
２．第 129 回研究会（平成 28 年 3 月 4 日）について（担当幹事：庫本、真下、久保、山本）・庫本幹事から研究会企画の進捗状況について説明があった。
３．来年度の予定について
・各回の担当幹事を決定した。9 月の大阪は今年度と同様に土曜日開催とすることとした。
第 130 回（平成 28 年 6 月 金曜日）神戸、担当：桑村、佐加良、塩見、坪田、横井
第 131 回（平成 28 年 9 月 土曜日）大阪、担当：伊川、塩谷、田島、真下、松田
第 132 回（平成 28 年 12 月 9 日 金曜日予定）京都、担当：岡田、喜多、近藤、中井、山添
第 133 回（平成 29 年 3 月 金曜日）京都、担当：浅野、久保、庫本、中村、山本
４．その他
・学部学生および大学院生の研究会参加費について検討した結果、研究会主催大学の所属に限らず学部学生および大学院生の参加費を無料とすることとした。

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・NPO 法人 関西 BS 交流会 齋藤學先生御執筆本「実験小動物の病気と病原体の検査法」の紹介について検討した結果、第 128 回研究会（平成 27 年 12 月 4 日）の際に受付横に展示することとした。
・本会と日本実験動物技術者協会との合同開催の研究会について今後検討することとした。
・本会の土曜日開催の是非について会員にアンケートを行うこととした。

評議員会の概要
第 33 回関西実験動物研究会評議員会
日時：平成 27 年 3 月 6 日（金）12:00～13:00
場所：京都大学 楽友会館 2 階講演室
出席： 44 名
浅野雅秀、阿部敏男、今井良悦、上田正次、海野 隆、大野民生、岡田利也、岡本宗裕、沖本一夫、
加藤啓子、金子武人、喜多正和、北田一博、久保 薫、倉林 譲、庫本高志、黒木宏二、桑村 充、
小池智也、近藤友宏、近藤 靖、佐藤 浩、塩谷恭子、鈴木 昇、芹川忠夫、高木貞明、高島俊行、
竹之下誠、田島 優、千葉 薫、坪田裕司、中井伸子、中村紳一郎、橋本正晴、平川公昭、平沢 勉、
星 信彦、増岡通夫、松田潤一郎、宮嶌宏彰、森島英喜、山中 久、山本好男、横井伯英
議事：１．平成 26 年度事業報告及び決算報告・桑村幹事より、平成 26 年度の事業報告があった。
・山本幹事より、会報第 36 号の発行について報告があった。
・庫本幹事より、平成 26 年度収支決算書について報告があった。
・海野評議員より、会員数について質問があった。
・喜多会長より、会員数について説明があった。
・橋本監事より、繰越決算書の監査の結果について報告があった。
・平成 26 年度収支決算報告が全会一致で承認された。
２．第 11 期（平成 26～28 年度）評議員及び幹事の異動
・喜多会長より、第 11 期（平成 26～28 年度）評議員及び幹事の異動について説明があった。
・喜多会長より、芹川評議員を名誉会員として推薦し、幹事会での議決を受け、本人の承諾を得たことの報告があった。
・第 11 期（平成 26～28 年度）評議員及び幹事の異動について全会一致で承認された。

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３．平成 27 年度事業計画（案）・桑村幹事より、平成 27 年度の事業計画（案）について説明があり、全会一致で承認された。
４．平成 27 年度予算（案）・庫本幹事より、平成 27 年度予算（案）について説明があり、全会一致で承認された。
５．メーリングリスト利用に関する申し合わせについて・喜多会長より、メーリングリスト利用に関する申し合わせについて説明があり、全会一致で承認された。
６．その他
・喜多会長より、会費未納入者について報告があった。
・喜多会長より、第 62 回日本実験動物学会総会（平成 27 年 5 月 28 日～30 日 京都テルサ）の案内があった。

総会の概要
第 32 回関西実験動物研究会総会
日時：平成 27 年 3 月 6 日（金）13:10～14:00
場所：京都大学 楽友会館 2 階講演室
司会の久保幹事より、総会の開催にあたり議長の推薦が求められた。
塩谷幹事が議長に選出された。
議事
１．平成 26 年度事業報告及び決算報告・桑村幹事より、平成 26 年度の事業報告があった。
・山本幹事より、会報第 36 号の発行について報告があった。
・庫本幹事より、平成 26 年度収支決算書について報告があった。
・橋本監事より、繰越決算書の監査の結果について報告があった。
・平成 26 年度収支決算報告が全会一致で承認された。
２．第 11 期（平成 26～28 年度）評議員及び幹事の異動
・喜多会長より、第 11 期（平成 26～28 年度）評議員及び幹事の異動について説明があった。
・喜多会長より、芹川評議員を名誉会員として推薦し、幹事会での議決を受け、本人の承諾を― 53 ―

得たことの報告があった。
・第 11 期（平成 26～28 年度）評議員及び幹事の異動について全会一致で承認された。
３．平成 27 年度事業計画（案）・桑村幹事より、平成 27 年度の事業計画（案）について説明があり、全会一致で承認された。
４．平成 27 年度予算（案）・庫本幹事より、平成 27 年度予算（案）について説明があり、全会一致で承認された。
５．メーリングリスト利用に関する申し合わせについて・喜多会長より、メーリングリスト利用に関する申し合わせについて説明があり、全会一致で承認された。
６．その他
・喜多会長より、第 62 回日本実験動物学会総会（平成 27 年 5 月 28 日～30 日 京都テルサ）の案内があった。

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関西実験動物研究会 維持会員名簿（平成27年度）（あいうえお順）
アステラスリサーチテクノロジー株式会社
EPS益新株式会社
小原医科産業株式会社
オリエンタル酵母工業株式会社
株式会社アイセイ
株式会社イナリサーチ 大阪支所
株式会社イブバイオサイエンス
株式会社エイチ・エス・ピー
株式会社エーテック
株式会社大塚製薬工場 研究開発センター
株式会社オリエンタル・バイオサービス
株式会社ケー・エー・シー
株式会社新日本科学
株式会社精研株式会社特殊免疫研究所
株式会社夏目製作所
株式会社日本医科学動物資材研究所
株式会社ビオスタ
株式会社美濃ラボ
株式会社レナテック
北山ラべス株式会社
財団法人動物繁殖研究所
三協ラボサービス株式会社
清水実験材料株式会社
白井松器械株式会社
大日本住友製薬株式会社
高塚ライフサイエンス株式会社
日精バイリス株式会社
日本エスエルシー株式会社
日本クレア株式会社
日本新薬株式会社
日本チャールス・リバー株式会社
ハムリー株式会社
株式会社ビッグバン
丸石製薬株式会社株式会社
三浦工業株式会社
有限会社キョウエー
有限会社メディア― 55 ―

関西実験動物研究会 評議員名簿（平成26-28年度）
氏 名
所属
浅野 雅秀 京都大学大学院医学研究科 附属動物実験施設
阿部 敏男 前 株式会社武田ラビックス光事業所
伊川 正人 大阪大学微生物病研究所 附属感染動物実験施設
池田 克己 武庫川女子大学 薬学部
池田 卓也
今井 良悦 武田薬品工業株式会社 湘南研究所
上田 正次 株式会社特殊免疫研究所 宇都宮事業所
海野 隆
株式会社JCLバイオアッセイ
大野 民生 名古屋大学大学院医学系研究科 附属医学教育研究支援センター
岡田 利也 大阪府立大学大学院生命環境科学研究科 実験動物学
岡本 宗裕 京都大学霊長類研究所 人類進化モデル研究センター
沖本 一夫 株式会社新日本科学 大阪病理センター
春日 久男 株式会社武田ラビックス
加藤 啓子 京都産業大学総合生命科学部 動物生命医科学科
金子 武人 京都大学大学院医学研究科 附属動物実験施設
喜多 正和 京都府立医科大学大学院医学研究科 実験動物センター
北田 一博 北海道大学大学院理学研究院
久保 薫
奈良県立医科大学先端医学研究機構 動物実験施設
倉林 譲
岡山大学医学部
庫本 高志 京都大学大学院医学研究科 附属動物実験施設
黒木 宏二 大日本住友製薬株式会社
桑村 充
大阪府立大学大学院生命環境科学研究科 獣医病理学
小池 智也 神戸大学大学院医学研究科 附属動物実験施設
小林 欣滋 株式会社新日本科学 安全性研究所病理研究部
近藤 玄
京都大学再生医科学研究所 附属再生動物実験施設
近藤 友宏 大阪府立大学大学院生命環境科学研究科 実験動物学
近藤 靖
田辺三菱製薬株式会社
佐加良 英治 兵庫医科大学 動物実験施設
佐藤 浩
自然科学研究機構 生理学研究所
塩見 雅志 神戸大学大学院医学研究科 附属動物実験施設
塩谷 恭子 国立研究開発法人国立循環器病研究センター研究所 動物実験管理室
鈴木 昇
三重大学生命科学研究支援センター 機能ゲノミクス分野
芹川 忠夫 京都疾患モデル研究所
高木 貞明 日本エスエルシー株式会社
高島 俊行 ハムリー株式会社国際事業部 大阪出張所
竹田 潤二 大阪大学大学院医学系研究科
竹之下 誠 株式会社イブバイオサイエンス
田島 優
大阪大学大学院医学系研究科 実験動物医学教室
千葉 薫
株式会社JTクリエイテイブサービス高槻事業所 動物管理課
坪田 裕司 大阪河﨑リハビリテーション大学 リハビリテーション学部
中井 伸子 日本新薬株式会社 研開企画統括部研開業務部 研開管理課
中村 紳一朗 滋賀医科大学 動物生命科学研究センター
橋本 正晴 株式会社ケー・エー・シー
原田 正史 大阪市立大学大学院医学研究科 動物実験施設
平川 公昭 株式会社新日本科学 大阪病理センター
平沢 勉
星 信彦
神戸大学大学院農学研究科 応用動物学講座
真下 知士 大阪大学大学院医学系研究科 実験動物医学教室
増岡 通夫 株式会社トランスジェニック
松田 潤一郎 国立研究開発法人医薬基盤・健康・栄養研究所 疾患モデル小動物研究室
宮下 信泉 香川大学総合生命科学研究センター 動物実験部門
宮嶌 宏彰 株式会社ケー・エー・シー
宮嶋 正康 和歌山県立医科大学 実験動物施設
森島 英喜 武田薬品工業株式会社 湘南研究所
山添 裕之 住友化学株式会社 生物環境科学研究所
山田 宜永 新潟大学農学部農業生産科学科 動物遺伝学
山中 久
株式会社イナリサーチ
山本 博
富山大学医学部ウイルス学教室
山本 好男 三重大学社会連携研究センター 伊賀研究拠点
横井 伯英 神戸大学大学院医学研究科 分子代謝医学― 56 ―

関西実験動物研究会 会長・幹事・監事名簿（平成26～28年度、平成27年10月現在）
氏
会

長

名

喜多 正和

庶 務 ・ 会 計 庫本 高志
宮嶋 正康
横井 伯英
集 会 （ 幹 事 長 ） 桑村 充

所属

京都府立医科大学大学院医学研究科 実験動物センター
京都大学大学院医学研究科 附属動物実験施設
和歌山県立医科大学 動物実験施設
神戸大学大学院医学研究科 分子代謝医学
大阪府立大学大学院生命環境科学研究科 獣医病理学

浅野 雅秀

京都大学大学院医学研究科 附属動物実験施設

伊川 正人

大阪大学微生物病研究所 附属感染動物実験施設

池田 卓也
岡田 利也

大阪府立大学大学院生命環境科学研究科 実験動物学

久保 薫

奈良県立医科大学先端医学研究機構 動物実験施設

近藤 玄

京都大学再生医科学研究所 附属再生動物実験施設

佐加良 英治兵庫医科大学 動物実験施設

塩見 雅志

神戸大学大学院医学研究科 附属動物実験施設

塩谷 恭子

国立研究開発法人国立循環器病研究センター研究所 動物実験管理室

田島 優

大阪大学大学院医学系研究科 実験動物医学教室

坪田 裕司

大阪河﨑リハビリテーション大学 リハビリテーション学部

真下 知士

大阪大学大学院医学系研究科 実験動物医学教室

松田 潤一郎

国立研究開発法人医薬基盤・健康・栄養研究所 疾患モデル小動物研究室

山添 裕之

住友化学株式会社 生物環境科学研究所

編 集 （ 委 員 長 ） 山本 好男

監事

三重大学社会連携研究センター 伊賀研究拠点

中井 伸子

日本新薬株式会社 研開企画統括部研開業務部 研開管理課

中村 紳一朗滋賀医科大学 動物生命科学研究センター

清水 英男

清水実験材料株式会社

橋本 正晴

株式会社ケー・エー・シー― 57 ―

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関西実験動物研究会会則
Ⅰ．総則（1）本会は関西実験動物研究会（Kansai Laboratory Animal Research Association）という。
（2）本会は関西地区において実験動物学ならびに関連諸科学の発達を図る事を目的とする。
（3）本会はその目的を達成するために以下の諸事業を行なう。
① 学術集会の開催② 会誌の発行③ 関係諸機関・諸学会との情報交換・連絡④ 会員相互の連絡⑤ その他必要と認められる事業
Ⅱ．会員（4）本会の会員は個人からなる普通会員と法人及びこれに準ずる団体からなる維持会員からなる。
（5）会員は本会の趣旨に賛同し、本会を維持するために会費を支払う。
（6）会費は前納とし、普通会員は年額 3,000 円、評議員は 5,000 円、維持会員は 30,000 円とする。
（7）会員は会誌の配付を受ける。
（8）本会に名誉会員をおくことができる。
Ⅲ．役員（9）本会の役員は、会長 1 名、評議員若干名及び 監事 2 名とする。
（10）会長は評議員の互選によって選出する。
（11）評議員は普通会員 3 名以上の推薦によって選出し、総会の承認を受ける。
（12）監事は評議員の推薦によって選出し、会長が委嘱する。
（13）会長は本会を代表し、会務を統理する。会長に支障があるときは評議員の互選により 1 名を選出し、会長の職務を代行する。
（14）会長は評議員会を召集し、その議長となる。
（15）評議員は評議員会を組織し、本会に関する重要な事項を審議・決定する。また、評議員の互選により選ばれた幹事は、幹事会を組織し、会長の補佐及び庶務、会計、集会、会誌発行などの会務を実行する。
（16）監事は会計を監査する。
（17）役員の任期は 3 年とし、再任を妨げない。
Ⅳ．総会（18）会長は毎年 1 回普通会員で構成される総会を召集し、会務の必要事項を報告し、承認を受ける。
Ⅴ．会計（19）本会の事業年度は毎年 1 月 1 日より 12 月 31 日までとする。
（20）本会の経費は会費、寄付金その他の収入をもってあてる。
Ⅵ．附則（21）本会則は昭和 59 年 3 月 16 日より施行する。
（22）本会則の改正は評議員会の議決を経て総会の承認を受ける。
（23）本会の事務局は京都市上京区河原町通広小路上る梶井町 465、京都府立医科大学実験動物センターに置く。
Ⅶ．附則（24）本会則は平成 2 年 3 月 9 日より施行し、平成 2 年 1 月 1 日より適用する。
（25）本会則は平成 8 年 3 月 9 日より施行し、平成 8 年 1 月 1 日より適用する。
（26）本会則は平成 14 年 3 月 8 日より施行し、平成 14 年 1 月 1 日より適用する。
（27）本会則は平成 25 年 3 月 1 日より施行し、平成 25 年 4 月 1 日より適用する。
（28）本会則は平成 26 年 3 月 7 日より施行し、平成 26 年 4 月 1 日より適用する。

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