プロファイルシート
１．病
２．病

原

名

Amyotrophia of Abalone
アワビ類の筋萎縮症

体1）

Abalone asfa-like virus (AbALV) (参考文献1)
a)

分類b)

形態c)

特徴

ウイルス粒径は200nm程度。
2本鎖DNA, 280kbp。ORF309個。GC含量 31.32%（未公表）
・クロアワビ、エゾアワビ、マダカアワビ、メガイアワビに感染し当歳貝に高い死亡率をもたらす。
・１歳以上の成貝では死亡率は低い。
・トコブシには感染しないようである。
・過去の論文で本病の特徴とされた異常細胞塊には必ずしもウイルス感染細胞が含まれず、本病との関係は不明。
・異常細胞塊や、同じく過去の論文で本病の特徴とされた貝殻の欠刻と真珠層への色素沈着は、メガイアワビでは観察されない。
・主にエラの細胞で増殖する。(以上 参考文献2)・水平感染する。洗卵で種苗への感染を防御できることから垂直感染はしないと思われる。
・水温18～20℃でウイルスの増殖が顕著（それ以下の水温は調査されていない）。
25℃以上ではウイルスの増幅は少ない。(未公表）
・1980年代初頭に初めて発生し、暖流域に分布し、寒流域には分布しないとされていた。
・公式発表はないが、2005年以降の調査では、東北地方の太平洋側と日本海側の両方で不調なエゾアワビから本ウイルスが検出されている。
・日本以外で本病は報告されていない。

３．地理的分布４．宿

未分類だが粒子の形態とゲノム解析からAsfaviridae 科に分類されると考えられる。

クロアワビ (Haliotis discus discus)
エゾアワビ (Haliotis discus hanai)
マダカアワビ (Haliotis madaka)
メガイアワビ (Haliotis gigantea)

主５．発生情報a) 潜伏期間

・病貝の飼育排水を7ヶ月齢のクロアワビとメガイアワビの飼育水へ導入したところ、3日目には一部の個体にウイルスが検出され、４週間後にウルス量は最大となり、４週間後から死亡が観察された。クロアワビとメガイアワビの62日後の累積死亡率は、それぞれ46と49%, 44と66％であった。いずれもdupli cateで測定。（参考文献２)・病貝の飼育排水を12ヶ月齢のマダカアワビとメガイアワビの飼育水槽へ導入した
ところ、3日目には一部の個体にウイルスが検出され、４週間後にウルス量は最大となった。マダカアワビでのウイルス量は、メガイアワビの10倍程度多かった。試験終了時の累積死亡率は、マダカアワビは78と92%(感染63日目）,メガイアワビで10と18％（感染78日目）であった。（未公表）
・4歳のクロアワビ、メガイアワビ、エゾアワビへの感染試験では、感染は成立するが死亡はほとんど起こらなかった。（参考文献2)b) キャリアー

ある程度成長したアワビは死亡せずキャリアとなるc) 感染経路

水を介して水平感染するd) ベクター不明e) 蔓延状況（死亡
感染が発生した種苗生産場では80%死亡することもある。
率、罹患率など）
殻長2mm程度のエゾアワビとマダカアワビで感染と死亡を確認している。５歳のメガf) 感染ステージ
イアワビ、クロアワビでも感染を確認している。
g) 感染要因不明
６．症

状
クロアワビでは真珠層に褐色の色素が沈着するとともに、貝殻に欠刻と呼ばれる切り込みが形成される場合がある。
メガイアワビでは外観症状が見られた例はない。
鰓の上皮細胞の並びが乱れる。Major capsid proteinに対する抗血清を用いた免疫染色では、陽性細胞は感染初期から死亡の盛期には鰓に、感染後期の死亡が減少すb) 組織検査る時期には筋肉に増加する傾向がある。（参考文献2)
過去の論文で本病の特徴とされた異常細胞塊は、メガイアワビでは観察されない。
水温が上昇しウイルスが減少した後にも死亡が継続する場合がある。高水温期の本c) 疑わしいケース
病に続く死亡では、ビブリオ属細菌が分離される傾向がある。(未公表）a) 臨床症状７．検査法a) 標的器官

ほとんど全ての組織から検出できるが、筋肉は採材が容易で検出感度も高い。体表から綿棒で拭いとった粘液からも検出が可能である。（参考文献３)

b) 診断法

PCR、定量PCR、免疫染色、in situハイブリダイゼーションc) サーベーランス 未実施d)

確定診断（参考）PCRDNA 抽出法
増幅領域
プライマー
増幅サイズ

次の2つ以上で確認される場合：免疫染色、in situ ハイブリダイゼーション、PCR
および増幅産物の配列決定。
Phenol-CHCl3 法, 市販のキットを用いた方法
Major capsid protein
p72-F: 5’-ATGGCGGCAGGAGGACCCTTCATTTTGATAACAAAC-3’
p72-R: 5’-TTATGCAGCATATCGCAAGATAGCTGATCCGTCGGTG-3’
1944 bp
98℃ 30秒、（98℃ 10秒、 65℃ 30秒、68℃ 90秒）×35サイクル、68℃ 5分

プロトコル（参考文献（参考）PCRDNA 抽出法
増幅領域
プライマー、産物
サイズ
増幅サイズ1）

Phenol-CHCl3 法, 市販のキットを用いた方法
TOPO isomerase
TOPO-F: 5’-GACTGTGTAAAAGGAGGCACTAATGGGATC-3’
TOPO-R: 5’-ATTTTACCACACCCATCAAGATCTTGATCAACAC-3’1207bp
98℃ 30秒、（98℃ 10秒、 65℃ 30秒、68℃ 90秒）×35サイクル、68℃ 5分

プロトコル（参考文献 1）（参考）定量PCR 1
Phenol-CHCl3 法, 市販のキットを用いた方法
DNA 抽出法
Major capsid protein
増幅領域
上流 Q-ASFV-like-F4 5′-cccggagcgacctacagaa-3′
プライマー、産物
下流 Q-ASFV-like-R4 5′-gcattccgacagcatcacag-3′サイズ
増幅サイズ

127 bp98℃ 2分、 （98℃ 10秒、60℃ 10秒、68℃30秒）×40サイクル

プロトコル（参考文献 1）（参考）定量PCR 2
Phenol-CHCl3 法, 市販のキットを用いた方法
DNA 抽出法
増幅領域
Major capsid protein
上流 p72-qF 5′- CCCATCCAACACTCATTCTC-3′
プライマー、産物
下流 p72-qR 5′- AGCCGAACATCTTCATTAAACC-3′
サイズ
TaqMan probe 5′- CGGCACTAAATGGTCCACAAACACCAA -3′ 5’FAM/3’BHQ1
増幅サイズ
189 bp98℃ 2分、 （95℃ 10秒、60℃ 30秒）×40サイクル
プロトコル
（未公表）
８．対

９．発生事例策a) 殺菌・滅菌方法 注水への紫外線照射で防除が可能
b) ワクチン
無・養殖場の調査、検疫の実施、親アワビと種苗の検査を行う。
・機器、車両、人などを介しての広がりを防ぐため、一般的なバイオセキュリティｃ) その他対策として、洗浄と消毒を行う。
・生きているアワビ類の移動を制限する。
九州地方から東北地方にかけて不調なアワビから本ウイルスを検出している。（未公表）

参考文献
1)Matsuyama, T., Takano, T., Nishiki, I., Fujiwara, A., Kiryu, I., Inada, M., ... & Nakayasu, C. (2020). A
novel Asfarvirus-like virus identified as a potential cause of mass mortality of abalone. Scientific reports,
10(1), 1-12.
2) Matsuyama, T., I. Kiryu, M. Inada, T. Takano and T. Kamaishi. (2021) Susceptibility of four abalone
species, Haliotis gigantea, Haliotis discus discus, Haliotis discus hannai and Haliotis diversicolor, toAbalone asfa-like virus. Viruses , 13(11), 2315; https://doi.org/10.3390/v131123153) 松山知正, 桐生郁也, 稲田真理, & 中易千早. (2021). PCR による Abalone asfa-like virus の検出に適した検体採取
部位の検証. 魚病研究, 56(1), 18-21.