マニュアル
Ver. 3.0

Code No. 310-06591

GM quicker 2 は「(別添)安全性未審査の組換え DNA 技術応
用食品の検査方法」のコメ(63Bt、NNBt、CpTI)の検査方法、
コメ(LL601)の検査方法、ナタネ(RT73 B. rapa)の検査方法に収載されています。(食安発 1116 第 3 号)

目 次

Ⅰ 製品説明2

Ⅱ キット内容

2

Ⅲ 保存

3

Ⅳ 使用上の注意

3

Ⅴ プロトコール3＜コメ DNA 抽出プロトコール＞

4＜コメ１粒からの DNA 抽出プロトコール＞

5＜ナタネ DNA 抽出プロトコール＞

6＜ナタネ 1 粒からの DNA 抽出プロトコール＞

7＜生ジャガイモからの DNA 抽出プロトコール＞

8

Ⅵ データ集10

１．コメ種子からの DNA 抽出および制限酵素消化10２．コメ種子から抽出した DNA の吸収スペクトル10３．コメ種子１粒からの DNA 抽出

11４．コメ種子１粒から抽出した DNA の PCR

12

５．ナタネ種子からの DNA 抽出および制限酵素消化12６．ナタネ種子から抽出した DNA の吸収スペクトル13

７．ナタネ種子１粒からの DNA 抽出

13

８．ジャガイモからの DNA 抽出および制限酵素消化14

９．ジャガイモから抽出した DNA の吸収スペクトル14

10．ジャガイモから抽出した DNA の PCR

15

11．その他の雑穀種子からの DNA 抽出

16

Ⅶ トラブルシューティング

17

Ⅷ 関連製品18

Ⅸ 簡易プロトコール

19１

GM quicker 2 Manual Ver. 3.0

Ⅰ 製品説明GM quicker 2 は、コメを始めとする穀物から DNA を抽出するためのキットです。本キットは、カオ
トロピックイオン存在下で DNA がシリカへ吸着する原理（Boom Technology）を採用しており、抽出操作にフェノールやクロロホルムなどの毒性有機溶媒を使用しません。遺伝子組換え作物（Genetically Modified Organisms：GMO）の検査においては、DNA を用いた方法が広く普及していますが、これまでの植物 DNA 抽出キットは抽出対象を「葉」としていたため、穀物からの DNA 抽出には必ずしも効率的ではありませんでした。
本キットでは、抽出対象を穀粒へ特化させることによって、約 40 分間という短い時間で高い精製度の DNA を抽出することができます。また、本キットはα-アミラーゼを使用する事により、うるち米のみならずもち米にも対応した設計となっており、コメ未知試料の検査において対応が可能です。
さらに、コメ及びナタネに関しては、1 粒検査のための DNA 抽出にも対応可能です。使用するスピ
ンカラムは、カラム容積を最大限確保しており、内封されたシリカゲル膜は、充分な DNA 吸着容量と高い溶出効率を確保しています。
本キットによって抽出された DNA は、PCR や制限酵素反応に適用することができます。

Ⅱ キット内容
GE1 Buffer

40 ml × 1 本 *GE2-K Buffer

5 ml × 1 本 *GB3 Buffer

12.5 ml × 1 本 *GW Buffer

40 ml × 1 本 *TE （pH 8.0）

10 ml × 1 本

Proteinase K (20 mg/ml)

1 ml × 1 本 *α-Amylase (高濃度品)

0.1 ml × 1 本 *RNase A (100 mg/ml)

0.5 ml × 1 本 *Spin Column

50 個

マニュアル

1部

* 別途、単品でお買い求めいただけます。詳細については 18 ページをご参照下さい。

２GM quicker 2 Manual Ver. 3.0

Ⅲ 保存
本キットに含まれる Proteinase K、α-Amylase 以外の全ての試薬と Spin Column は室温保存（15℃～25℃）が可能です。 Proteinase K、α-Amylase は冷凍保存（-20℃）して下さい。
RNase A は室温保存が可能ですが、長期間ご使用にならない場合には、冷蔵保存（2～10℃）
もしくは冷凍保存（－20℃）して下さい。
GW Buffer にはエタノールが含まれていますので、ご使用後は蒸発を防ぐために必ず蓋を閉めて下さい。

Ⅳ 使用上の注意
・本キットは試験研究用試薬ですので、医薬品、その他の目的にはご使用になれません。
・試薬についての基本的な知識のある方以外は取り扱わないで下さい。
・本キットのお取り扱いは、マニュアル記載内容通りに行って下さい。
・マニュアル記載内容と異なったお取り扱いによるトラブルにつきましては、弊社では責任を負いかねます。

Ⅴ プロトコール＜本キット以外に必要な試薬、機器など＞
・イソプロパノール
・マイクロピペット
・ピペットチップ・2.0 ml マイクロチューブ
・1.5 ml マイクロチューブ
・フードミル・遠心機
・ボルテックスミキサー
・ペッスル

３

GM quicker 2 Manual Ver. 3.0

＜コメ DNA 抽出プロトコール＞① コメをフードミル等で粉砕し、コメ粉末試料を調製する。
＊粉砕しない方法 ： 2.0 ml チューブにコメ 20 粒を入れ、700μl の GE1 Buffer で 20 分間、室温静置する。ペッスル等で良く破砕し、20μl の Proteinase K、2μl のα-Amylase および 10μl の RNase A をそれぞれ添加する。ボルテックスミキサーにて 30 秒間攪拌する → ③に続く

② 2.0 ml チューブに 0.5 g のコメ粉末試料を秤量し、700μl の GE1 Buffer、20μl のProteinase K、2μl のα-Amylase および 10μl の RNase A をそれぞれ添加する。ボル
テックスミキサーにて 30 秒間攪拌する。（注１）＊もち米が試料中に混入していない事が予め分かっている場合は、α-Amylase を添加しなくて良い。

③ 15 分間、60℃ で加温する。
＊もち米が試料中に混入していない場合は、65℃で加温する。

④ 85μl の GE2-K Buffer を添加し（注２）、ボルテックスミキサーにてよく混和する。
＊室温に戻ったことを確認してから GE2-K Buffer を添加する。

⑤ 遠心（≧13K×g, 5 分間, 室温）する。（注３）⑥ 上清 400μl を新しい 1.5 ml チューブに移す。（注４）⑦ 150μl の GB3 Buffer を添加後、150μl のイソプロパノールを添加し、10～12 回チューブを激しく転倒させ、よく混和する。（注５）⑧ ⑦の混合液を Spin Column に全量移し、遠心（13K×g, 30 秒間, 室温）し、濾液は廃棄する。
⑨ 650μl の GW Buffer を Spin Column に添加した後、遠心（13K×g, 60 秒間, 室温）し、濾液は廃棄する。
⑩ Spin Column を新しい 1.5 ml マイクロチューブに移す。
⑪ 50μl の TE（pH8.0）を滴下した後、3 分間室温で静置する。

⑫ 遠心（13K×g, 60 秒間, 室温）し、濾液を回収する。

４

GM quicker 2 Manual Ver. 3.0

＜コメ１粒からの DNA 抽出プロトコール＞① コメ種子１粒をアルミホイル等で包み、金槌等で粉砕し、コメ粉末試料を調製する。
＊粉砕しない方法 ： 1.5 ml チューブにコメ 1 粒を入れ、250μl の GE1 Buffer で 20 分間、室温静置する。ペッスル等で良く破砕し、10μl の Proteinase K、2μl のα-Amylase および 5μl の RNase A をそれ
ぞれ添加する。ボルテックスミキサーにて 30 秒間攪拌する → ③に続く

② 1.5 ml チューブにコメ粉末試料を添加し、250μl の GE1 Buffer、10μl の Proteinase K、
2μl のα-Amylase および 5μl の RNase A をそれぞれ添加する。ボルテックスミキサーにて 30 秒間攪拌する。（注１）＊もち米でない事が予め分かっている場合は、α-Amylase を添加しなくて良い。

③ 15 分間 60℃で加温する。
＊もち米でない場合は、65℃で加温する。

④ 40μl の GE2-K Buffer を添加し（注２）、ボルテックスミキサーにてよく混和する。
＊室温に戻ったことを確認してから GE2-K Buffer を添加する。

⑤ 遠心（≧13K×g, 5 分間, 室温）する。（注３）⑥ 上清 200μl を 1.5 ml マイクロチューブに移す。（注４）⑦ 75μl の GB3 Buffer を添加後、75μl のイソプロパノールを添加し、10～12 回チューブを激しく転倒させ、よく混和する。（注５）⑧ ⑦で得られた 混合液を Spin Column に全量移し、遠心（13K×g, 30 秒間, 室温）し、濾液は廃棄する。
⑨ Spin Column に 650μl の GW Buffer を添加した後、遠心（13K×g, 60 秒間, 室温）し、濾液は廃棄する。
⑩ Spin Column を新しい 1.5 ml マイクロチューブに移す。
⑪ 50μl の TE（pH8.0）を滴下した後、3 分間室温で静置する。
⑫ 遠心（13K×g, 60 秒間, 室温）し、濾液を回収する。

５

GM quicker 2 Manual Ver. 3.0

＜ナタネ DNA 抽出プロトコール＞① ナタネ種子をフードミル等で破砕し、ナタネ試料を調製する。
② 2.0 ml チューブで 0.2 g のナタネ粉末試料を秤量し、800μl の GE1 Buffer、20μl のProteinase K、10μl の RNase A をそれぞれ添加する。ボルテックスミキサーにて 30 秒間攪拌する。（注１）③ 15 分間 65℃で加温する。
④ 100μl の GE2-K Buffer を添加し（注２）、ボルテックスミキサーにてよく混和する。
＊室温に戻ったことを確認してから GE2-K Buffer を添加する。

⑤ 遠心（≧13K×g, 5 分間, 室温）する。（注３）⑥ 上清 350μl を新しい 1.5 ml チューブに移す。（注４）⑦ 130μl の GB3 Buffer を添加する。
⑧ 130μl のイソプロパノールを添加し、10～12 回チューブを激しく転倒させ、よく混和する。（注５）⑨ ⑧の混合液を Spin Column に全量移し、遠心（13K×g, 30 秒間, 室温）し、濾液は廃棄する。
⑩ 650μl の GW Buffer を Spin Column に添加した後、遠心（13K×g, 60 秒間, 室温）し、濾液は廃棄する。
⑪ Spin Column を新しい 1.5 ml マイクロチューブに移す。
⑫ 50μl の TE（pH8.0）を滴下した後、3 分間室温で静置する。
⑬ 遠心（13K×g, 60 秒間, 室温）し、濾液を回収する。

６

GM quicker 2 Manual Ver. 3.0

＜ナタネ１粒からの DNA 抽出プロトコール＞① 1.5 ml チューブにナタネ種子１粒を入れ、ペッスルで良く破砕する。
② 250μl の GE1 Buffer、10μl の Proteinase K、5μl の RNase A をそれぞれ添加する。
ボルテックスミキサーにて 30 秒間攪拌する。（注１）③ 15 分間 65℃で加温する。
④ 40μl の GE2-K Buffer を添加し（注２）、ボルテックスミキサーにてよく混和する。
＊室温に戻ったことを確認してから GE2-K Buffer を添加する。

⑤ 遠心（≧13K×g, 5 分間, 室温）する。（注３）⑥ 上清 200μl を 1.5 ml マイクロチューブに移す。（注４）⑦ 75μl の GB3 Buffer を添加する。
⑧ 75μl のイソプロパノールを添加し、10～12 回チューブを激しく転倒させよく混和する。（注５）⑨ ⑧で得られた 混合液を Spin Column に移し、遠心（13K×g, 30 秒間, 室温）し、濾液は廃棄する。
⑩ Spin Column に 650μl の GW Buffer を添加した後、遠心（13K×g, 60 秒間, 室温）し、濾液は廃棄する。
⑪ Spin Column を新しい 1.5 ml マイクロチューブに移す。
⑫ 50μl の TE（pH8.0）を滴下した後、3 分間室温で静置する。
⑬ 遠心（13K×g, 60 秒間, 室温）し、濾液を回収する。

７

GM quicker 2 Manual Ver. 3.0

＜生ジャガイモからの DNA 抽出プロトコール＞＊凍結乾燥ジャガイモ粉砕試料から DNA 抽出する場合、Proteinase K 及びα-Amylase は使用しません。その他の操作は、コメのプロトコール（p.4）と同じです。

① 生ジャガイモを約 3 mm 角のサイコロ状にナイフを用いて細かく切断する。
② 1.5 ml チューブに細かくした試料を約 0.3 g 秤量し、500μl の GE1 Buffer 及び 4μl のRNaseA (100 mg/ml)を添加し、ペッスルで良く破砕する。(注 6)③ ボルテックスミキサーにて 30 秒間 攪拌する。
④ 85μl の GE2-K Buffer を添加し(注 2)、ボルテックスミキサーにてよく混和する。
⑤ 遠心（≧13K ×g、5 分間、室温）する。(注 3)⑥ 上清 400μl を 1.5 ml チューブに移す。(注 4)⑦ 150μl の GB3 Buffer を添加する。
⑧ 150μl のイソプロパノールを添加し、 10～12 回チューブを激しく転倒させ、よく混和する(注 5)⑨ ⑧で得られた混合液の全量を Spin column に移し、遠心（13K×g、30 秒間、室温）し、濾液は廃棄する。
⑩ Spin Column に 650μl の GW Buffer を添加した後、遠心（13K×g、60 秒間、室温）し、濾液は廃棄する。
⑪ Spin Column を新しい 1.5 ml マイクロチューブに移す。
⑫ 50μl の TE (pH8.0)を滴下した後、3 分間室温で静置する。
⑬ 遠心（13K×g 、60 秒間、室温）し、濾液を回収する。

８

GM quicker 2 Manual Ver. 3.0

(注１)攪拌操作が不十分な場合、DNA の収量が著しく減少します。また、チューブをボルテ
ックスミキサーへ斜めにあてた場合、泡が大量に発生し攪拌効率が低下します。ボルテックスミキサーに対してチューブを垂直にあて、そのまま 30 秒間、しっかりと攪拌を行って下さい。攪拌が不十分であれば、更に 30～60 秒間攪拌を行って下さい。

(注２)②の操作で発生した泡がチューブ内に残っていても、続けて GE2-K Buffer を加えて下さい。②の混合液の粘度が高くなっているので、添加した GE2-K Buffer が十分に混ざるように転倒混和して下さい。

(注３)

使用する冷却遠心機のローターの最高回転数および 1.5ml チューブの最大耐 gを確認して下さい。

(注４)

沈殿や浮遊物を可能な限り取らないように上清を回収して下さい。

(注５)

GB3 Buffer、イソプロパノールの順に添加した後に攪拌操作を行って下さい。その際に析出物が生じて白濁している場合には、液が透明になるまで十分に転倒混和して
下さい。

(注６)

フードミルなどで破砕した後に抽出を行うと、ゲノミック DNA の電気泳動像がスメアになる事があるので、GE1 Buffer を添加後に破砕して下さい。

９GM quicker 2 Manual Ver. 3.0

Ⅵ データ集
1.コメ種子からの DNA 抽出および制限酵素消化本キットを用いてコメの種子から DNA 抽出を行った。いずれの種子からも DNA を抽出することができた。また、抽出した DNA を制限酵素 EcoRⅠで消化した。
1

2

3

4

5

6

7

8
Lane 1, 8：OneSTEP Marker 6(λ/ StyⅠ digest)
Lane 2 ：コシヒカリ genomic DNA intact
Lane 3 ：コシヒカリ genomic DNA/ EcoRⅠdigest
Lane 4 ：タイ米 genomic DNA intact
Lane 5 ：タイ米 genomic DNA/ EcoRⅠdigest
Lane 6 ：もち米 genomic DNA intact
Lane 7 ：もち米 genomic DNA/ EcoRⅠdigest＊本キットで抽出した DNA の 400 ng を 1% Agarose S
ゲルで電気泳動した。

2.コメ種子から抽出した DNA の吸収スペクトル
A260 付近に吸収ピークがあることから、本キットで抽出した DNA は高純度であることが示唆された。

0.35
0.30
0.25

Abs

0.20
0.15
0.10
0.05
0.00
220

240

260

280

300

320

Wavelength[ nm ]図 1．本キットでコシヒカリ種子から抽出した DNA の吸収スペクトル１０

GM quicker 2 Manual Ver. 3.0

0.45
0.40
0.35

Abs

0.30
0.25
0.20
0.15
0.10
0.05
0.00
220

240

260

280

300

320

Wavelength[ nm ]図 2．本キットでタイ米種子から抽出した DNA の吸収スペクトル

0.35
0.30
0.25

Abs

0.20
0.15
0.10
0.05
0.00
220

240

260

280

300

320

Wavelength[ nm ]図 3．本キットでもちコメ種子から抽出した DNA の吸収スペクトル3.コメ種子１粒からの DNA 抽出
本キットを用いてコメ種子１粒から DNA 抽出を行った。
1

2

3

4

5
Lane 1, 5：OneSTEP Marker6 (λ/ StyⅠdigest)
Lane 2：コシヒカリ玄米 genomic DNA

Lane 3：コシヒカリ精米 genomic DNA

Lane 4：コシヒカリ米飯 genomic DNA＊本キットで抽出した DNA 50μl 中 20μl を 1% Agarose S
ゲルで電気泳動した。

１１

GM quicker 2 Manual Ver. 3.0

4.コメ種子１粒から抽出した DNA の PCR
本キットを用いて抽出した、コメ（コシヒカリ）種子１粒からの DNA サンプル 0.1μl を鋳型としてコシヒカリ特異的な領域を PCR にて増幅した。抽出サンプルによる PCR 阻害について確認した。

1

2

3

5

4

6
Lane 1, 6：OneSTEP Marker 4 (φX174/ HaeⅢdigest)
Lane 2：コシヒカリ玄米 genomic DNA を鋳型に増幅

Lane 3：コシヒカリ精米 genomic DNA を鋳型に増幅

Lane 4：コシヒカリ米飯 genomic DNA を鋳型に増幅

Lane 5：Negative control＊PCR 産物の一部 (10μl)を 2% Agarose S ゲルで電気泳動した。

5.ナタネ種子からの DNA 抽出および制限酵素消化本キットを用いてナタネの種子から DNA 抽出を行った。いずれの種子からも DNA を抽出することができた。また、抽出した DNA を制限酵素 EcoRⅠで消化した。

1

2

3

4

5

6

7

8
Lane 1, 8 ：OneSTEP Marker 6(λ/ StyⅠ digest)
Lane 2, 4, 6：ナタネ genomic DNA intact
Lane 3, 5, 7：ナタネ genomic DNA/ EcoRⅠdigest＊本キットで抽出した DNA の 400 ng を 1% Agarose S
ゲルで電気泳動した。

１２GM quicker 2 Manual Ver. 3.0

6.ナタネ種子から抽出した DNA の吸収スペクトル
A260 付近に吸収ピークがあることから、本キットで抽出した DNA は高純度であることが示唆された。

0.50
0.45
0.40
0.35

Abs

0.30
0.25
0.20
0.15
0.10
0.05
0.00
220

240

260

280

300

320

Wavelength[ nm ]図 4．本キットでナタネ種子から抽出した DNA の吸収スペクトル7.ナタネ種子１粒からの DNA 抽出
本キットを用いてナタネ種子１粒から DNA 抽出を行った。
1

2

3

4

5
Lane 1, 5：OneSTEP Marker6 (λ/ StyⅠdigest)

Lane 2, 3, 4：ナタネ genomic DNA＊本キットで抽出した DNA 50μl 中 15μl を1% Agarose S ゲルで電気泳動した。

１３GM quicker 2 Manual Ver. 3.0

8．ジャガイモからの DNA 抽出および制限酵素消化本キットを用いて生ジャガイモから DNA 抽出を行った。からも DNA を抽出することができた。また、抽出した DNA を制限酵素 EcoRⅠで消化した。
1

2

3

5

4

6

7

8
Lane 1, 8：OneSTEP Marker 6 (λ/ StyⅠ digest)
Lane 2 ：男爵 genomic DNA intact
Lane 3 ：男爵 genomic DNA/ EcoRⅠdigest
Lane 4 ：メークイン genomic DNA intact
Lane 5 ：メークイン genomic DNA/ EcoRⅠdigest
Lane 6 ：凍結乾燥ジャガイモ genomic DNA intact
Lane 7 ：凍結乾燥ジャガイモ genomic DNA/EcoRⅠ
digest＊本キットで抽出した DNA の 200 ng を 1% Agarose S
ゲルで電気泳動した。

9.ジャガイモから抽出した DNA の吸収スペクトル
A260 付近に吸収ピークがあることから、本キットで抽出した DNA は高純度であることが示唆された。
0.4
0.35
0.3
Abs

0.25
0.2
0.15
0.1
0.05
0
220

240

260

280

300

320

Wavelength [ nm ]図 5．本キットでメークインジャガイモから抽出した DNA の吸収スペクトル

１４

GM quicker 2 Manual Ver. 3.0

0.4
0.35
0.3
Abs

0.25
0.2
0.15
0.1
0.05
0
220

240

260

280

300

320

Wavelength [ nm ]図 6．本キットで男爵ジャガイモから抽出した DNA の吸収スペクトル10.ジャガイモから抽出した DNA の PCR
本キットを用いて抽出した、ジャガイモの DNA 溶液 25 ng を鋳型として PCR(ジャガイモ内在性遺伝子 UGP)を行い、抽出サンプルによる PCR 阻害について確認した。
[参考資料(PCR)：厚生労働省監修 食品衛生検査指針 理化学編 2005]

1

2

3

4

5

6

7
Lane 1,7：OneSTEP Marker 11 (φX174/ HaeⅢdigest)
Lane 2 ： Positive Control を鋳型に増幅
Lane 3 ： No template Control
Lane 4 ： 男爵ジャガイモ DNA を鋳型に増幅
Lane 5 ： メークインジャガイモ DNA を鋳型に増幅
Lane 6 ： 凍結乾燥ジャガイモ DNA を鋳型に増幅＊ PCR 産物の一部 (5μl)を 3% Agarose 21 ゲルで電気泳動した。
＊結果良好な増幅が認められた。
Positive Control ： GM ジャガイモ定性試験用陽性コントロールプラスミド（Code No.：317-06501）

１５GM quicker 2 Manual Ver. 3.0

11.その他の雑穀種子からの DNA 抽出
本キットを用いて、コメ以外の雑穀種子からも DNA 抽出を行った。以下の穀物において DNA を抽出することができた。
1

2

3

4

5

6

7

8

9

10

11
Lane 1, 11：OneSTEP Marker 6(λ/ StyⅠdigest)
Lane 2：ダイズ genomic DNA

Lane 3 ：トウモロコシ genomic DNA＊本キットで抽出した DNA の 400 ng を 1% Agarose S

Lane 4：コムギ genomic DNA

Lane 5：ヒエ genomic DNA

Lane 6：キビ genomic DNA

Lane 7：アワ genomic DNA

Lane 8：ハトムギ genomic DNA

Lane 9：堅丸麦 genomic DNA

Lane 10 ：アマランサス genomic DNA

ゲルで電気泳動した。
＊各粉砕試料量は以下の通り。
ダイズ ・・・ 50 mg
トウモロコシ、コムギ、堅丸麦及びアマランサス ・・・ 200 mg
ヒエ、キビ、アワ及びハトムギ ・・・ 300 mg

１６

GM quicker 2 Manual Ver. 3.0

Ⅶ トラブルシューティング
問題

考えられる原因考えられる対策
出来るだけ細かく試料を粉砕して下さい。

試料の粉砕が不十 また、粉砕試料の粒径が均一であることが望ましい分。

ので、必要に応じて「ふるい」等で粒径を揃えて下さい。
GE1 Buffer および RNase A を添加後、よくボルテックスして下さい。

抽出効率が低下し 2.0 ml チューブを斜めにボルテックスにあてた場ている。

合、泡が大量に出て攪拌効率が下がりますので、DNA の収量がチューブをボルテックスに垂直にあてよく攪拌を行少ない。

って下さい。
TE(pH8.0)を Spin Column へ添加した後、直ぐに遠溶出が不十分。

心溶出を行った場合、DNA 収量にばらつきが生じます。一定の DNA 収量を得るため、室温で数分間静置した後、溶出を行って下さい。

遠心温度が 15 ℃

室温（15 ℃ - 25 ℃）で遠心して下さい。

以下
酵 素 処 理 温 度 が マニュアル記載の温度に調節して下さい。
70℃以上
RNA の混入が多い。

RNase A の失活。

GE1 Buffer と RNase A は混合して保存することができません。それぞれを別々に保存して下さい。

GB3 Buffer を

GE2-K Buffer 添加後、十分攪拌を行って下さい。

添加後に現れ（参考：試料によっては白沈が残る場合がありまた白色沈殿がす。この場合、GE2-K Buffer を添加後に十分攪拌

イソプロパノー 攪拌が不十分。

を行い、遠心分離を行った後、その上清を Spin

ルおよびエタノ

Column へ移して下さい。）

ール添加後も多 量 に 残 存する。
遠心分離後の沈殿 上清を回収する際は、沈殿をチップの先で触れな
OD260/280 値が 物もしくは浮遊物を いように注意しながら行って下さい。
低い。

Spin Column に持ち込んでいる。

１７

GM quicker 2 Manual Ver. 3.0

Ⅷ 関連製品
Code No.

製品名

包装単位

317-06361

GM quicker

50 回用

311-07241

GM quicker 3

50 回用

316-07791

GM quicker 4

50 回用

319-07161

GM quicker 96

96 ｳｪﾙﾌﾟﾚｰﾄ×4

317-07341

On-Site Column Set for GM quicker

20 回用

314-06371

GE1 Buffer

500 ml

311-06381

GE2 Buffer

200 ml

318-06391

RNase A（100 mg/ml）

0.5 ml×5

311-06641

GW Buffer

40 ml×2

318-06651

GE2-K Buffer

100 ml

315-06661

GB3 Buffer

12.5 ml×2

312-06671

GM quicker 2 Enzyme Set

1 Set(Proteinase K 2 ml, α-Amylase 0.2 ml)
316-90025

TE (pH8.0)

500 ml318-90105

Distilled Water, Deionized, Sterile

500 ml

312-01193

Agarose S

100 g

313-03242

Agarose 21

25 g

312-06512

Agarose XP

25 g

310-06513

Agarose XP

100 g

311-02682

Agarose X

25 g

311-05281

OneSTEP Marker 6

1,500 μl

318-05791

OneSTEP Marker 4

375 μl

312-05831

OneSTEP Marker 11

375 μl

319-08141

Collection Tube

100 回用１８

GM quicker 2 Manual Ver. 3.0

Ⅸ 簡易プロトコール

１９

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２０

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２１

GM quicker 2 Manual Ver. 3.0

２２

GM quicker 2 Manual Ver. 3.0

２３

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＜メモ欄＞

２４

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＜メモ欄＞

２５

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＜メモ欄＞

２６

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お問い合わせ先株式会社ニッポンジーン
研究試薬部 学術営業課
T E L 076 - 451 - 6548
U R L http://www.nippongene.com/siyaku/
お問い合わせは、お電話もしくは WEB フォームより承っております。

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