プロファイルリスト
１．病

Yellow head disease (YHD)
イエローヘッド病
YHV名

２．病 原 体a) 分 類

ロニウイルス科（Roniviridae）
オカウイルス属（Okavirus）1)b) 形 態・エンベロープ有り、桿状、大きさ40-60 x 150-200 nm
・カプシッドは正20面体構造、表面にスパイク構造（11 nm）2)c) 特 徴・RNAウイルス（1本の1本鎖RNA）3)。
・分子量 26 kbp4)
・3つの構造タンパク質から構成される（p24。Gp64、gp116）4)
・YHDは、10の遺伝子型ウイルスグループ（Yellowhead complex）の内の一つであるYellow head virus(YHV)に起因する17)。
・YHVは海水中で最長72時間は感染力を維持できる5)

３．地理的分布中国、台湾、インドネシア、マレーシア、フィリピン、スリランカ、タイ王国、ベトナム、インド6)

４．宿・ウシエビ(Penaeus monodon )6)・ホワイトレッグシュリンプ（Liptopenaeus vannamei ）7)・ブルーシュリンプ(L.stylirostris )7)
自然感染
・クルマエビ(Marsupenaeus japonicus )8, 9)・テンジクエビ（Fenneropenaeus merguiensis ）8, 9)・ブルーシュリンプ(L.stylirostris )7)・ホワイトシュリンプ(L.setiferus )8, 9)・ヨシエビ(Metapenaeus ensis )8, 9)・Mysid shrimp（Palaemon styliferus ）8, 9)・オキアミ(Acetes sp .)8)
実験感染・ブラウンタイガー（P. esculentus ）10)
・ノーザンブラウンシュリンプ（F. aztecus ）10)
・ノーザンピンクシュリンプ（P. duorarum ）10)
・グリーンテイルプラウン（Metapenaeus bennettae ）10)
・Sunda river prawn (Macrobrachium sintangense )10)
・スジエビモドキ（Palaemon serrifer ）10)
・The paste prawn（Ascetes sp .）10)
・グラスシュリンプ（Palaemonetes pugio ）10)

主５．発生情報a) 潜伏期間―b) キャリアー

天然エビはキャリアーとなり得る（未確認）・水平感染（共食い）・垂直感染すると考えられる（未確認）―c) 感染経路d) ベクターe) 蔓延状況（死 ・感染を経験した養殖場を除き、天然および養殖場におけるP. monodon における検出率は１％以下
亡率、罹患率な ・過密養殖池で発症しやすく、発症すると3日程度で斃死個体がみられ、他個体への伝播は非常に速い
ど）・死亡率は3～5日で100%に達することもある11) 。
f) 感染ステージ P. monodon : PL15以降12)g) 発生水温－h) 感染要因
ストレス（pH、溶存酸素その他環境要因の急激な変化）で重篤化13)６．症状a) 臨床症状

・全身が退色する。
・数日間過剰な摂餌行動を示した後、摂餌不良となる。
・養殖池隅の水面近くを緩慢に遊泳する。
・肝膵臓の黄色化により頭胸部が薄黄色化を示す個体も現れる11)。

b) 組織検査・肝膵臓の黄色化・（鰓など）固定標本を作製し、濃く塩基性に染まる球状の細胞質内封入体（≦2μm）の有無を確認する。
・（血リンパ）塗抹標本を作製し、核濃縮、核崩壊の有無を確認する11)。

７．検 査 法・リンパ様器官、血球、造血組織、鰓弁・腸管、触角腺、生殖腺、神経路および神経節の皮下結合組織b) 簡易検査法 ウェットマウント11)、組織検査、血液塗抹検査c) サーベーラン PCRa) 標的器官

d) 確定診断
DNAプローブ in situ15) 、PCR、シークエンス（参考）ウイルス分離
培養細胞/分離―培地
培養条件―
CPE/コロニー性―状その他―（参考）PCR
リンパ様器官、鰓、血リンパなどからRNAを抽出する。
リンパ様器官および鰓は、分子生物学グレードの95%エタノールもしくはRNAlater中で保存するか、-70℃にて凍結保存する。10から20 mgの各組織もしくは50 μlの血リンパ液からRNA抽出試薬（TrizolTM）500 μ
RNA 抽出法lを用い、マニュアルに従いRNAを抽出する。RNAは25 μlのDEPC処理水で溶解し、55℃で10分間加温し、氷上で急冷するか、使用時まで-70℃にて保存する。
＜初動診断法：RT-PCR検査（逆転写ポリメラーゼ連鎖反応法）＞16)
10F ：5'-CCGCTAATTTCAAAAACTACG-3'
144R：5'-AAGGTGTTATGTCGAGGAAGT-3'
増幅産物サイズ；135bp＜最終診断法：RT-nested PCR検査＞・・・初期診断法のRT-PCR検査に加えて、次の方法も実施i)1st RT-PCR、材料；リンパ組織、鰓又は血リンパの抽出RNA
GY1：5'-GACATCACTCCAGACAACATCTG-3'
GY4：5'-GTGAAGTCCATGTGTGTGAGACG-3'
増幅産物サイズ；794bpii)2nd PCR、材料；1st PCRの反応液
GY2：5'-CATCTGTCCAGAAGGCGTCTATGA-3'
Y3 ：5'-ACGCTCTGTGACAAGCATGAAGTT-3'
プライマー、産物 増幅産物サイズ；277bp
サイズ＜genotype1-7を検出可能なnested RT-PCR検査＞
YC-F1ab pool:5’-ATC-GTC-GTC-AGC-TAC-CGC-AAT-ACT-GC-3’
5’-ATC-GTC-GTC-AGY-TAY-CGT-AAC-ACC-GC-3’
YC-R1ab pool:5’-TCT-TCR-CGT-GTG-AAC-ACY-TTC-TTR-GC-3’5’-TCT-GCG-TGG-GTG-AAC-ACC-TTC-TTG-GC-3’
増幅産物サイズ；358bp
YC-F2ab pool:5’-CGC-TTC-CAA-TGT-ATC-TGY-ATG-CAC-CA-3’5’-CGC-TTY-CAR-TGT-ATC-TGC-ATG-CAC-CA-3’
YC-R2ab pool:5’-RTC-DGT-GTA-CAT-GTT-TGA-GAG-TTT-GTT-3’5’-GTC-AGT-GTA-CAT-ATT-GGA-GAG-TTT-RTT-3’
増幅産物サイズ；146bp＜初動診断法：RT-PCR検査（逆転写ポリメラーゼ連鎖反応法）＞
逆転写反応；60℃で30分間反応後、94℃で２分間処理（キット使用）
反応；94℃で30秒間続いて58℃で30秒間、72℃で30秒間を40サイクル
最後に72℃で10分間

プロトコル＜最終診断法：RT-nested PCR検査＞i)1stRT-PCR
逆転写反応；60℃で30分間反応後、94℃で２分間処理（キット使用）
反応；95℃で30秒間続いて66℃で30秒間、72℃で45秒間を35サイクル
最後に72℃で７分間
ii)2nd PCR
反応；95℃で30秒
続いて66℃で30秒間、72℃で45秒間を35サイクル
最後に72℃で7分間＜genotype1-7を検出可能なnested RT-PCR検査＞i)1stRT-PCR逆転写反応；50℃で30分間反応後、94℃で2分間処理（キット使用）
初期変性；95℃で15分間反応；94℃で45秒間，60℃で45秒間、68℃で45秒間を35サイクル
最終伸長；68℃で7分間ii)2nd PCR
初期変性；95℃で15分間反応；94℃で45秒間，60℃で45秒間、72℃で45秒間を35サイクル
最終伸長；72℃で7分間

８．対策a) 殺菌・滅菌方法

YHVは60℃15分の加熱処理で不活化される5)30 ppt（0.03mg/ml）の塩素処理で不活化されるb) ワクチン―c) その他

ORF1a/1bに対する二本鎖RNA の接種で死亡率は減少する

９．発生事例・1990年にタイで養殖していたブラックタイガーに発生

10．その他―

出典1) Cowley J.A., Walker P.J., Flegel T.W., Lightner D.V., Bonami J.R., Snijder E.J. & DE Groot R.J. (2012): Family Roniviridae. In: VirusTaxonomy, IXth Report of the International Committee on Taxonomy of Viruses, King A., Adams M., Carstens E. & Lefkowitz E.J., eds.
Elsevier, Academic Press, London, UK, 797–801.
2) Wongteerasupaya C, Sriurairatana S, Vickers JE, Akrajamorn A et al., (1995) Dis. Aquat. Org., 22, 45–50
3) Tang, K. F. J., Lightner, D. V. (1999): Dis. Aquat. Org., 35, 165–173
4) N. Sittidilokratna, S.N. Dangtip, J.A. Cowley, P.J. Walker (2008): Virus Res., 136, 157–165
5) Flegel T.W., Sriurairatana S., Wongterrasupaya C., Boonsaeng V., Panyim S. & Ithyachumnarnkul B. (1995b): Proceedings of the Special
Session on Shrimp Farming, Aquaculture ’95, Browdy C.L. & Hopkins J.S., eds. World Aquaculture Society, Baton Rouge, USA, 76–83.
6) Walker P.J., Cowley J.A. Spann K.M., Hodgson R.A.J. Hall M.R & Withyachumnarnkul B. (2001): In: The New Wave, Proceedings of theSpecial Session on Sustainable Shrimp Culture, Aquaculture 2001, Browdy C.L. & Jory D.E., eds. The World Aquaculture Society, BatonRouge, LA, USA, 292–302.
7) Castro-Longoria R., Quintero-Arredondo N., Grijalva-Chon J.M. & Ramos-Paredes J. (2008): J. Fish Dis., 31 (12), 953–956.
8) Flegel T.W., Fegan D.F. & Sriurairatana S. (1995): In: Diseases in Asian Aquaculture II, Shariff M., Subasinghe R.P. & Arthur J.R., eds. Asian
Fisheries Society, Manila, the Philippines, 65–79.
9) Flegel T.W., Sriurairatana S., Wongterrasupaya C., Boonsaeng V., Panyim S. & Withyachumnarnkul B.
(1995): In: Swimming Through Troubled Water, Proceedings of the Special Session on Shrimp Farming, Aquaculture ’95, Browdy C.L. &Hopkins J.S., eds. World Aquaculture Society, Baton Rouge, USA, 76–83.
10) Ma H., Overstreet R.M. & Jovonovich J.A. (2009): J. Invert. Pathol. 101, 112–118.
11) Chantanachookin C., Boonyaratpalin S., Kasornchandra J., Direkbusarakom S., Aekpanithanpong U.,
Supamattaya K., Sriuraitana S. & Flegel T.W. (1993): Dis. Aquat. Org., 17, 145–157.
12) Khongpradit R., Kasornchandra J. & Boonyaratalin S. (1995): In: Diseases in Asian Aquaculture II, Shariff
M., Subasinghe R.P. & Arthur J.R., eds. Asian Fisheries Society, Manila, the Philippines, p. 6.
13) Flegel T.W., Boonyaratpalin S. & Withyachumnarnkul B. (1997): In: Diseases in Asian Aquaculture III, Flegel T.W. & MacRae I.H., eds. FishHealth Section, Asian Fisheries Society, Manila, the Philippines, 285–296.
14) Lightner D.V. (ED.) (1996). Handbook of Pathology and Diagnostic Procedures for Diseases of Penaeid Shrimp. World Aquaculture Society,Baton Rouge, USA.
15) Tang K.F.J., Spann K.M., Owens L. & Lightner D.V. (2002): Aquaculture, 205, 1–5.
16) Wongteerasupaya C., Boonsaeng V., Panyim S., Tassanakajon A., Withyachumnarnkul B. & Flegel T.W. (1997): Dis. Aquat. Org., 31, 181–186.
17）Moody N, Mohr P, Hoad J, Williams N, Cummins D, Slater J, Crane M. (2017) Book of Abstracts 18th International Conference on Diseases