プロファイルリスト
１．病a) 分 類

Infection with Ostreid Herpesvirus 1 (OsHV-1) microvariants
カキヘルペスウイルス１型変異株感染症
OsHV-1 microvariants（OsHV-1 μVarを含む）
マラコヘルペスウイルス科（Malacoherpesviridae）1)b) 形 態

大きさ120nm、20面体、エンベロープあり

c) 特 徴・1995年にフランスのマガキ幼生より検出され、ゲノム解析に供試されたOsHV-1をreference typeと呼んでいる。
・Microvariantのうち、Segarra et al (2010)によって報告されている特定の遺伝子タイプをOsHV-1 μVarと呼ぶ。
・OIEマニュアルでは、ORF4上流の繰り返し配列、ORF4、ORF42/43に変異のある変異型をmicrovariantsとしている1)。

名

２．病 原 体３．地理的分布４．宿ヨーロッパ（フランス、アイルランド、イタリア、オランダ、ポルトガル、スペイン、イギリス）、オーストラリア、韓国、ニュージーランド
マガキ（Crassostrea gigas ） OsHV-1 μVarは主にマガキで報告
ポルトガルガキ (C. angulata )主

５．発生情報a) 潜伏期間

・感染後１週間程度
・カキ類の成貝b) キャリアー・ヨーロッパイガイ（Mytilus edulis）、フランスナミノコ（Donax trunculus）よりOsHV-1 μVarが検出された例があるが、ベクターであるかは不明。
c) 感染経路・海水を介した水平感染により宿主から宿主に感染すると推定。
d) ベクター・海水を介した水平感染により宿主から宿主に感染すると推定されている。
3)e) 蔓延状況（死 ・2008年にフランスでμVarによる大量死が発生（死亡率80〜100%） 。
・フランスの種苗を輸入したアイルランドでもμVarが発生。
亡率、罹患率な・ヨーロッパやオセアニアではmicrovariantによる死亡が確認されている。
ど）・microvariantが確認されても大量死のない例も報告されている（日本）。
・幼生および稚貝で死亡が認められる。
f) 感染ステージ・健康な成貝からウイルスが検出されることがある。
・OsHV-1による死亡は高水温期に発生するため、水温が大きく影響していると考えられる。
・高水温が必ずOsHV-1による大量死を引き起こすとは限らず、関連性があまり認められないとの報告もg) 感染要因1)ある 。
６．症状a) 臨床症状b) 組織検査・口を開ける、殻を閉じる動きが緩慢になる。
・上記の症状は他の疾病でも認められる。
・幼生は摂餌不良となる。
・核の肥大と染色質の核膜への偏在を伴う病変が主に結合組織で観察される。

７．検 査 法・あらゆる器官の結合組織。
・PCRには幼生や稚ガキ（100-200mg）、2-3mm角に切った外套膜を使用。
b) 簡易検査法 c) サーベーラン d) 確定診断
PCR, qPCR, ORF4上流の繰り返し配列、ORF4、ORF42/43のシーケンス（参考）ウイルス分離
培養細胞/分離 脊椎、無脊椎動物の株化細胞や初代培養細胞を用いたウイルス培養の試みはなされているが、成功し培地ていない。
培養条件
CPE/コロニー性状その他a) 標的器官

（参考）PCRDNA 抽出法

市販の抽出キットPCR 2)
1) A3/A4 約1000bp
A3; GCCAACCGTTGGAACCATAACAAGCG
A4; GGGAATGAGGTGAACGAAACTATAGACC2) C2/C6 約700bp
C2; CTCTTTACCATGAAGATACCCACC’C6; GTGCACGGCTTACCATTTTT
3) C13/C5 約760bp
C13; CCTCGAGGTAGCTTTTGTCAAGC15; GATTACCCAGATTCCCCTC4) Gp3/Gp4 約700bp
Gp3; GGTTGTGGGTTTGGAAA TGT
Gp4; GGCGTCCAAACTCGATTAAA
5) C9/C10 約200bp
プライマー、産物 C9; GAGGGAAA TTTGCGAGAGAAサイズC10; ATCACCGGCAGACGTAGG
qPCR（Sybr Green）
1) B4/B3
B4; ACTGGGATCCGACTGACAAC
B3; GTGGAGGTGGCTGTTGAAA T2) C9/C103) Gp4/Gp7
Gp4; GGCGTCCAAACTCGATTAAA
GP7; TTACACCTTTGCCGGTGAATqPCR (TaqMan)
OsHV1BF; GTCGCATCTTTGGATTTAACAA
B4; GTGGAGGTGGCTGTTGAAA T
Probe; FAM-TGCCCCTGTCATCTTGAGGTATAGACAATC-TAMRA
3)PCRo94 C 2min
94oC 1min, 50oC 1min, 72oC 1min 35サイクル
72oC 5min
プロトコル

qPCR（Sybr Green）
95oC 10minooo
95 C 30sec, 60 C 45sec, 72 C 45sec 40サイクル
ooo
95 C 1min, 60 C 30sec, 95 C 30sec
qPCR (TaqMan)
95oC 10min
95oC 5sec, 60oC 20sec 40サイクル

８．対策a) 殺菌・滅菌方 ・高水温や化学物質、UVによりエンベロープが破壊されると推測される。
b) ワクチン-c) その他

・μVarを含め、OsHV-1に感受性の低い系統が得られている。
・低感受性の系統はフランスのフィールドでも死亡が少なかったとのことである。
・オーストラリアでは感受性の低いシドニーロックオイスターとヒラガキの養殖が行われている。
・陸上施設では、濾過海水やUV処理海水を使用するなど防疫体制を整えることが重要である。
・瀕死、死亡個体はすぐに廃棄し、発生地域で使用した漁具等は未発生地域に持ち込まない。

９．発生事例
10．その他

・qPCRにより感染個体のウイルス量を把握できる。疫学調査では、組織1mgあたり10＾4コピー以上のウイルス量で死亡が起こる可能性が高いとされている。

出典1)Davison A.J., Eberle R., Ehlers B., Hayward G.S., McGeoch D.J., Minson A.C., Pellett P.E., Roizman B., Studdert M.J. and E. Thiry (2009)
The order Herpesvirales. Arch. Virol., 154, 171-177
2)Batista F.M., Arzul I., Pepin J-F., Ruano F., Friedman C. S., Boudry P. and T. Renault (2007) Detection of ostreid herpesvirus 1 DNA byPCR in bivaolve molluscs: A critical review. J. Virol. Methods, 139, 1-11.
3)Renault, T. and I. Arzul (2001): Herpes-like virus infections in hatchery-reared bialve larvae in Europe: specific viral DNA detection byPCR. J. Fish Dis., 24, 161-167