プロファイルリスト
１．病名

２．病 原 体a) 分 類b) 形 態

大きさ100～130nm、エンベロープありc) 特 徴・RNAウイルス（8本の１本鎖RNA）・4種の構造タンパク：分子量68,22,42,50kDa
・2大グループ（ヨーロッパ、北アメリカ）
・ヨーロッパグループは３群に分岐・HPR（ヘマグルチニンン遺伝子の高変異部位）による型分がなされており、基本的にはHPR０（欠損DNAなし）は病原性が低く、HRP欠損株は病原性がある。
・しかし、HPR０が変異し大西洋サケに病原性を示す可能性があり、HPR０タイプも疾病発生リスクがあることが報告されている（Godoy et al., 2014、Christiansen et al., 2017） 。
・ノルウエー・カナダ
・イギリス
・フェール諸島
・アメリカ
・チリ(自然発症)
・大西洋サケ（Salmo sala）(ウイルス分離)・ニジマス(Oncorhynchus mykiss)：アイルランド
・ギンザケ(O. kisutch)：チリ（野生:非病原）・大西洋サケ・ブラウントラウト、シートラウト(S. trutta)(人為感染)
・ニジマス
・ニジマスの系統によっては浸漬感染により60％の死亡率 （Biacchesi et al., 2007)
・アマゴ（腹腔内注射で20％、浸漬感染により5％の死亡率、Ito et al., 2015)
・ブランウントラウト、シートラウト
・ホッキョクイワナ(Salvelinus alpinus)
・ニシン(Clupea harengus)
・大西洋タラ(Gadus morhua)

３ ． 地 理 的分
布４．宿Infectious salmon anamia (ISA)
伝染性サケ貧血症
ISAV
オルソミクソウイルス科(Orthomyxoviridae)
アイエスエーウイルス属(Isavirus)

主５．発生情報－・アトランティックサーモンの感染持続は不明、ただ養殖場では持続感染有。
b) キャリアー・ニジマス・ブラウンマスでは実験的に感染継続
・ニジマス・ブラウンマスでは実験的に感染継続．水平感染(経水)（感染リスクの可能性）
・発病生簀及び処理場の5Km以内
c) 感染経路
・多量の稚魚の導入・船による移送・器具、人員の共通
サケジラミ（Lepeophtheirus salmonis）
d) ベクター・死亡率と罹病率は様々e) 蔓延状況（死・死亡率0.5-1.0%より始まり初夏、初冬で最大亡率、罹 患率な・累積死亡率で最大90%
ど）・生簀により異なる・海面生簀で発症
・淡水期（稚魚）の発生は僅か
f) 感染ステージ ・人為感染で稚魚、仔魚にも感染・系統で感受性が相違・年中発生g) 感染要因
ハンドリング（手分け、移送、薬浴など）
a) 潜伏期間

６．症状a) 臨床症状

・鰓の退職、眼球突出、腹部膨満、眼窩出血、時に表皮（特に腹部）出血・体腔液の黄色化または出血・内臓、囲心腔の僅かな出血
・腎臓、脾臓の暗色化・肥大化
・筋肉の点状出血・病魚は非摂餌、不活発、網側面へ滞留
・ヘマトクリット値10以下（最終段階）
・血液塗抹標本
変成し、空砲化した赤血球変形核の幼若赤血球
白血球の対赤血球比の減少b) 組織検査

・鰓の中心静脈洞と鰓薄板毛細血管の充血と血栓の形成
・肝臓の、大血管周囲の多数の出血と肝細胞の壊死。拡張した肝類洞中の赤血球の充血
・腸管上皮の血管の充血、出血
・脾臓髄質の充血による膨張
・腎臓の糸球体の充血、尿細管の壊死を伴う間質組織の出血
・脾臓の血球貪食と腎臓、肝臓の２次出血

７．検 査 法内皮細胞（心臓、肝臓、腎臓、脾臓、その他）、 白血球・非破壊検査：血液a) 標的器官
・ウイルス分離・PCR：心臓、腎臓・サーべーランス（PCR）：心臓、腎臓、＋鰓・組織：腎臓、肝臓、心臓、膵臓/腸、脾臓、鰓、表皮/筋肉b) 簡易検査法 ウェットマウント（間接蛍光抗体）、組織検査c) サーベーラン ウイルス分離・同定、RT-PCR、real time RT-PCR
ウイルス分離・同定、RT-PCR、real time RT-PCRd) 確定診断（参考）ウイルス/細菌分離培 養細 胞/ 分 離 ・SHK-1,ASK（継代によりウイルスに対する感受性が低下）
培地
・TO、CHSE-214
培養条件

15℃７日間以上培養

CPE/コロニー性
空砲化、球形化と剥離状
その他（参考）PCR
RNA抽出法HPR0 が広範囲に発生しているため、検出されたウイルスがHPR欠損株またはHPR0株のいずれであるかを判断するために、セグメント7または8のRT-PCRで陽性であった場合、セグメント6のシーケンスが必要。
市販のRNA抽出キット
RT-PCR セグメント6を基に設計
5’-GAC-CAG-ACA-AGC-TTA-GGT-AAC-ACA-GA-3’5’-GAT-GGT-GGA-ATT-CTA-CCT-CTA-GAC-TTG-TA-3’
304 bp （HPR0の時）

Real-time RT-PCR(1) セグメント7を基に設計
forward：5’-CAG-GGT-TGT-ATC-CAT-GGT-TGA-AAT-G-3’
プライマー、産物
reverｓe：5’-GTC-CAG-CCC-TAA-GCT-CAA-CTC-3’
サイズ
prove：5’-6FAM-CTC-TCT-CAT-TGT-GAT-CCC-MGB MGBNFQ-3’(2)セグメント8を基に設計
forward：5’-CTA-CAC-AGC-AGG-ATG-CAG-ATG-T-3’
reverse：5’-CAG-GAT-GCC-GGA-AGT-CGA-T-3’
prove：5’-6FAM-CAT-CGT-CGC-TGC-AGT-TC-TAMRA-3’
プロトコル
８．対

PCR試薬キットマニュアル参照

策・紫外線照射：1/1000減少照射量＞35Jm-2(淡水)、50Jm-2(海水)・オゾン海水：a) 殺菌 ・滅 菌方 8mg/ml, 4分 (600-750 mV レダックス電位)・56℃30分処理法
・pH処理
組織ﾎﾓｼﾞﾈｰﾄ、pH4 又はpH12で 24時間
・塩素処理
塩素100mg/ml, 15分b) ワクチンｃ) その他

９．発生事例
10．その他

・北アメリカ、フェロー諸島で5年間実施・現在完全防御するワクチンはできていない・ウイルス粒子の不活化ワクチンではキャリアになる可能性有・耐病性系群の検討
・標準手法による卵消毒－出典・Christiansen et al., (2017). First field evidence of the evolution from a non-virulent HPR0 to a virulent HPR-deleted infectious salmon
anaemia virus. Journal of General Virology, 98(4), 595-606.
・Godoy et al.,（2014) Infectious salmon anaemia virus (ISAV) in Chilean Atlantic salmon (Salmo salar) aquaculture: emergence of low
pathogenic ISAV-HPR0 and re-emergence of virulent ISAV-HPRΔ: HPR3 and HPR14. Virology Journal, 10, 344.
・Biacchesi et al., (2007) Fish genotype significantly influences susceptibility of juvenile rainbow trout, Oncorhynchus mykiss (Walbaum),
to waterborne infection with infectious salmon anaemia virus. Journal of Fish Diseases 30, 631–636.
・Ito et al., (2015) Susceptibility of Amago trout, Oncorhynchus masou macrostomus (Günther) to an isolate of infectious salmon
anaemia virus (ISAV). Journal of Fish Diseases 38, 237–240